Arrêté du 12 novembre 1986 relatif aux méthodes officielles de dosage des vitamines A, D et E dans les aliments pour animaux familiers
   Les laboratoires chargés de concourir à l'application de la réglementation relative à la répression des fraudes sont tenus d'employer, pour déterminer les teneurs en vitamines A, D et E dans les aliments pour animaux familiers, les méthodes décrites en annexe du présent arrêté.


Le directeur général de la concurrence, de la consommation et de la répression des fraudes au ministère de l'économie, des finances et de la privatisation est chargé de l'exécution du présent arrêté, qui sera publié au Journal officiel de la République française.

AnnexesI. - Dosage de la vitamine A.II. - Dosage de la vitamine D.III. - Dosage de la vitamine E.
   1. Objet et domaine d'application.
   La présente méthode a pour objet de doser le rétinol (vitamine A) dans les aliments secs ou humides pour animaux familiers.
   2. Principe.
   Hydrolyse à chaud de l'échantillon par une solution d'hydroxyde de potassium en milieu éthanolique. Extraction par l'éther de pétrole. Dosage de la vitamine A contenue dans cet extrait par chromatographie liquide haute performance (C.L.H.P.) sur colonne de gel de silice et détection U.V.
   Les formes trans, 13 - cis et 9 - cis du rétinol sont séparées.
   3. Réactifs.
   Les réactifs doivent être de qualité analytique. L'eau utilisée doit être de l'eau distillée ou de l'eau de pureté au moins équivalente.
   3.1. Ethanol à 95 p. 100 vol.
   3.2. Solution à 20 p. 100 (m/v) de pyrogallol dans l'éthanol (3.1).
   3.3. Solution 0,5 M de sulfure de sodium dans la glycérine à 70 p. 100 (v/v).
   3.4. Solution à 50 p. 100 (m/v) d'hydroxyde de potassium.
   3.5. Ether de pétrole (ébullition 40 - 65 °C).
   3.6. Phase mobile : mélange 99/1 (v/v) d'isooctane et d'alcool isopropylique.
   3.7. Acétate de trans-rétinol.
   3.8. Solution étalon de trans-rétinol.
   Préparation :
   Mettre dans un ballon de 250 ml une prise d'essai d'acétate de trans-rétinol contenant environ 15 000 à 20 000 U.I. de rétinol, ajouter 5 ml de solution de pyrogallol (3.2), 35 ml d'éthanol (3.1) et 10 ml de solution d'hydroxyde de potassium (3.4). Chauffer durant trente minutes à 70 - 80 °C sous réfrigérant à reflux et laisser ensuite refroidir sous courant d'eau. Ajouter 40 ml d'eau et 100 ml d'éther de pétrole (3.5). Extraire par agitation deux à trois minutes. Laisser décanter dans le ballon. Transvaser la phase supérieure dans une ampoule à décanter (4.3). Laver cette phase éthérée jusqu'à neutralité avec des fractions de 50 ml d'eau et la sécher à l'aide de bandes de papier filtre. Dans deux fioles jaugées de 50 ml faire, à la pipette, deux prélèvements de 5 ml de la phase éthérée.
   Compléter à 50 ml avec de l'éther de pétrole la première fiole. Evaporer sous courant d'azote le contenu de la deuxième fiole et compléter ensuite à 50 ml avec de l'alcool isopropylique. La concentration en rétinol de cette solution sera déterminée par la mesure de sa densité optique à 325 nm : C (U.I./ml) =
 18,3 X D.O..
   C'est la solution éthérée contenue dans la première fiole qui sera injectée dans le chromatographe.
   4. Appareillage.
   Matériel courant de laboratoire et notamment :
   4.1. Rampe de chauffage (chauffe-ballon ou bain d'eau) avec réfrigérants à rodage.
   4.2. Ballons de 500 ml à rodage adaptable aux réfrigérants.
   4.3. Ampoules à décanter de 500 ml.
   4.4. Appareil rotatif à évaporation sous vide.
   4.5. Appareil de C.L.H.P. avec détection par absorption U.V..
   4.6. Colonne de gel de silice 10 mm (longueur 30 cm ; diamètre intérieur 4 mm) ou système équivalent donnant des facteurs de capacité de la colonne (k') de l'ordre de 3,7 pour le 13 - cis, 4,1 pour le 9 - cis et 5,3 pour le trans.
   4.7. Spectrophotomètre.
   5. Mode opératoire.
   5.1. Préparation de l'échantillon pour essai.
   5.1.1. Cas des produits secs :
   Tout ou partie de l'échantillon est broyé de façon à pouvoir passer à travers les mailles d'un tamis de 1 mm d'ouverture. Homogénéiser.
   5.1.2. Cas des aliments humides.
   Tout ou partie de l'échantillon est haché finement. Homogénéiser.
   Note - Les échantillons doivent être traités juste avant l'analyse. L'analyse ne doit pas être effectuée en lumière directe.
   5.2. Hydrolyse et extraction.
   Introduire 25 g de l'échantillon préparé et pesé à 0,01 g près dans un ballon de 500 ml (4.2). Ajouter successivement 10 ml de solution de pyrogallol (3.2), 4 ml de solution de sulfure de sodium (3.3), 70 ml d'éthanol (3.1) et 20 ml de solution d'hydroxyde de potassium (3.4). Chauffer durant trente minutes à 70 - 80 °C sous réfrigérant à reflux et laisser ensuite refroidir sous courant d'eau. Ajouter 80 ml d'eau et 100 ml d'éther de pétrole (3.5). Extraire par agitation une à deux minutes. Laisser décanter dans le ballon. Verser la phase organique supérieure dans une ampoule à décanter de 500 ml. Récupérer dans le ballon la phase aqueuse qui serait passée dans l'ampoule. Extraire encore deux fois dans le ballon par des fractions de 100 ml d'éther. Laver la phase organique obtenue après les extractions jusqu'à neutralité et éliminer les traces d'eau à l'aide de bandes de papier filtre. Evaporer à sec ainsi que l'éther servant à rincer l'ampoule. Reprendre le résidu sec par 25 ml d'éther exactement mesurés. C'est cet extrait qui sera injecté dans le chromatographe.
   5.3. Conditions de la chromatographie liquide haute performance :
   Débit de la phase mobile : 2 ml/minute ;
   Longueur d'onde de détection : 325 nm avec une lampe au Deutérium ou filtre à 313 nm avec lampe à vapeur de mercure ;
   Sensibilité du détecteur : 0,020 ;
   Volumes injectés : 10 ml pour l'étalon et la quantité appropriée de la solution obtenue en 5.2.
   6. Mode de calcul et formule.
   La teneur en vitamine A, exprimée en Unités Internationales par gramme d'échantillon, est donnée par la formule suivante :
   (formule non reproduite, voir au Journal officiel).
   Cet : concentration de la solution étalon calculée selon 3.7.
   Aet : surface du pic de l'étalon.
   Aech. Cis- Aech. trans : surfaces des pics du cis et du trans-rétinol de l'échantillon.
   Iet - Iech : volumes de l'injection de la solution étalon et de l'échantillon.
   Set - Sech : sensibilités du détecteur pour l'étalon et l'échantillon (remarque 7.1).
   Vf : volume final (25 ml dans la méthode).
   P : prise d'essai.
   0,815 : facteur correctif pour le cis rétinol : rapport des absorbances et activité (0,75/0,92) (remarque 7.2).
   7. Remarques.
   7.1 Si la mesure des surfaces s'effectue à l'aide d'un intégrateur branché sur la sortie intégration du détecteur, ne pas tenir compte dans le calcul du rapport des sensibilités.
   7.2 Les colonnes de gel de silice permettent de séparer la 13 - cis rétinol, 9 - cis rétinol et le trans-rétinol. Le 9 - cis peut être négligé car lorsqu'il est présent, il est en faible quantité. Il est très difficile d'avoir un étalon de 13 - cis rétinol, cet isomère sera donc dosé à l'aide de l'étalon de trans-rétinol. On tiendra compte pour le calcul du 13 - cis rétinol de sa différence d'absorbance avec le trans et de son activité vitaminique qui n'est que de 75 p. 100 de celle du trans.

   1. Objet et domaine d'application.
   La présente méthode a pour objet de doser la vitamine D dans les aliments secs ou humides pour animaux familiers.
   2. Principe.
   Hydrolyse à chaud de l'échantillon par une solution d'hydroxyde de potassium en milieu éthanolique. Extraction par l'éther de pétrole et purification par deux chromatographies sur colonne. Dosage de la vitamine D par chromatographie liquide haute performance (C.L.H.P.) sur colonne de gel de silice et détection U.V..
   La méthode ne permet pas de séparer l'ergocalciférol (vitamine D2) du cholécalciférol (vitamine D3).
   3. Réactifs.
   Les réactifs doivent être de qualité analytique. L'eau utilisée doit être de l'eau distillée ou de l'eau de pureté au moins équivalente.
   3.1. Ethanol à 95 p. 100 vol.
   3.2. Solution à 20 p. 100 (m/v) de pyrogallol dans l'éthanol (3.1).
   3.3. Solution à 50 p. 100 (m/v) d'hydroxyde de potassium.
   3.4. Ether de pétrole (ébullition 40-65 °C).
   3.5. Magnésie active (S 120 Fisher Scientific Company ou équivalent).
   3.6. Hyflo supercel.
   3.7. Mélange 1/1 (m/m) de (3.5) et (3.6).
   3.8. Sulfate de sodium anhydre.
   3.9. Alumine active neutre (Merck 1077 ou équivalent). Activer l'alumine à 100 °C à l'étuve pendant une nuit. Refroidir en dessicateur et conserver en flacon bouché.
   3.10. Ether de pétrole à 5 p. 100 d'acétone (v/v). Sécher cette solution sur sulfate de sodium (3.8).
   3.11. Ether de pétrole à 8 p. 100 (v/v) d'alcool absolu.
   3.12. Ether de pétrole à 2 p. 100 (v/v) d'acétone. Sécher cette solution sur sulfate de sodium (3.8).
   3.13. Ether de pétrole à 20 p. 100 (v/v) d'acétone. Sécher cette solution sur sulfate de sodium (3.8).
   3.14. Solutions étalon : solution mère à 500 mg/ml (20 000 U.I./ml) dans l'isooctane. Solution de travail à 5 mg/ml (200 U.I./ml) dans l'isooctane.
   3.15. Phase mobile : mélange 99/1 (v/v) d'isooctane et d'alcool isopropylique.
   4. Appareillage.
   Matériel courant de laboratoire, et notamment :
   4.1. Rampe de chauffage (chauffe-ballon ou bain d'eau) avec réfrigérants à rodage.
   4.2. Ballons d'un litre à rodage adaptable aux réfrigérants.
   4.3. Ampoules à décanter de 500 ml.
   4.4. Appareil rotatif à évaporation sous vide.
   4.5. Colonnes pour chromatographie, en verre, de 25 cm de longueur et 25 mm de diamètre intérieur, munies d'un fritté de porosité 2 dans la partie inférieure.
   4.6. Colonnes pour chromatographie, en verre, de 25 cm de longueur et 14 mm de diamètre intérieur.
   4.7. Appareil de C.L.H.P. avec détection par absorption U.V..
   4.8. Colonne de gel de silice de 10 mm (30 cm de longueur et 4 mm de diamètre intérieur) ou système équivalent donnant un facteur de capacité (k') de l'ordre de 3.5.
   5. Mode opératoire.
   5.1. Préparation de l'échantillon pour essai.
   5.1.1. Cas des produits secs :
   Tout ou partie de l'échantillon est broyé de façon à pouvoir passer à travers les mailles d'un tamis de 1 mm d'ouverture. Homogénéiser.
   5.1.2. Cas des aliments humides :
   Tout ou partie de l'échantillon est haché finement. Homogénéiser.
   Note - Les échantillons doivent être traités juste avant l'analyse. L'analyse ne doit pas être effectuée en lumière directe.
   5.2. Hydrolyse et extraction.
   Introduire 60 g de l'échantillon préparé et pesé à 0,01 g près dans un ballon de un litre (4.2). Ajouter successivement 20 ml de solution de pyrogallol (3.2), 160 ml d'éthanol (3.1) et 45 ml de solution d'hydroxyde de potassium (3.3). Chauffer durant 30 minutes à 70-80 °C sous réfrigérant à reflux et laisser ensuite refroidir sous courant d'eau. Ajouter 180 ml d'eau et 250 ml d'éther de pétrole (3.4) exactement mesurés. Extraire par agitation pendant quatre à cinq minutes. Laisser décanter dans le ballon. Verser la phase organique supérieure dans une ampoule à décanter de 500 ml. Laver cette phase jusqu'à neutralité et éliminer les traces d'eau à l'aide de bandes de papier filtre. Evaporer à sec 200 ml exactement mesurés. Reprendre le résidu par 50 ml d'éther de pétrole à 5 p. 100 d'acétone (3.10).
   5.3. Chromatographie sur colonne magnésie - hyflo supercel.
   Verser dans la colonne (4.5) la quantité adéquate du mélange (3.7) tout en s'aidant du vide afin de bien tasser la colonne qui doit avoir 5 cm de hauteur de mélange. Mettre au sommet de la colonne du sulfate de sodium (3.8) sous une hauteur de 1 à 2 cm. Verser le contenu du ballon sur la colonne et l'éluer en s'aidant légèrement du vide.
   Récupérer l'éluat dans la fiole à filtrer et continuer l'élution avec deux fois 50 ml du réactif (3.10).
   Evaporer à sec l'éluat et reprendre par 5 ml environ d'éther de pétrole (3.4).
   5.4. Chromatographie sur alumine.
   Introduire un tampon de coton au fond de la colonne (4.6) et verser 20 ml environ d'éther de pétrole (3.4). Verser ensuite 7 g d'alumine (3.10). Protéger la tête de colonne par un peu de coton. Laisser s'écouler l'éther de pétrole. Verser ensuite 6 ml d'éther de pétrole à 8 p. 100 d'alcool absolu (3.11) puis 10 ml d'éther de pétrole (3.4). Verser l'extrait obtenu en 5.3 après la première purification. Rincer le ballon à l'aide de fractions d'éther de pétrole et les verser sur la colonne. Rincer la colonne par 40 ml d'éther de pétrole à 2 p. 100 d'acétone (3.12). Eliminer ces éluats. Eluer la colonne avec 50 ml d'éther de pétrole à 20 p. 100 d'acétone (3.13). Evaporer à sec l'éluat et reprendre le résidu par 3 ml exactement mesurés d'isooctane (3.15). C'est cet extrait deux fois purifié qui sera injecté dans le chromatographe.
   5.5. Conditions de la chromatographie liquide haute performance :
   Débit de la phrase mobile : 1 ml/minute ;
   Longueur d'onde de détection : 264 nm avec une lampe au Deutérium ou filtre à 254 nm avec une lampe à vapeur de mercure ;
   Sensibilité du détecteur : 0,005 ;
   Volumes injectés : 5 ml pour l'étalon ; 25 ml pour l'échantillon.
   6. Mode de calcul et formule.
   La teneur en vitamine D, exprimée en Unités Internationales par gramme d'échantillon, est donnée par la formule suivante :
   (formule non reproduite, voir au Journal officiel).
   C et : concentration de la solution étalon (U.I./ml).
   A et A ech : surfaces des pics de l'étalon et de l'échantillon.
   I et I ech : volumes de l'injection de la solution étalon et de l'échantillon.
   S et S ech : sensibilités du détecteur pour l'étalon et l'échantillon (Remarque 7.2).
   Vi : volume d'extraction (250 ml dans la méthode).
   Vr : volume prélevé après extraction (200 ml dans la méthode).
   Vf : volume final après concentration (3 ml dans la méthode).
   P : prise d'essai.
   7. Remarques.
   7.1. Pour la séparation de la vitamine D, la colonne de silice utilisée doit être très sélective. Si, à l'usage, la colonne ne donne pas la séparation souhaitée, on peut essayer de la régénérer en faisant passer 75 ml de chloroforme, puis 75 ml de méthanol, puis à nouveau 75 ml de chloroforme. Restabiliser la colonne avec la phase mobile.
   7.2. Si la mesure des surfaces s'effectue à l'aide d'un intégrateur branché sur la sortie intégration du détecteur, ne pas tenir compte dans le calcul du rapport des sensibilités.
   7.3. Dans le cas des aliments humides où les teneurs en vitamine D sont souvent très faibles, il est recommandé de prendre toutes les précautions analytiques, lorsqu'un dossier sera susceptible d'être présenté au Parquet.

   1. Objet et domaine d'application.
   La présente méthode a pour objet de doser l'alpha tocophérol (vitamine E) dans les aliments secs ou humides pour animaux familiers.
   2. Principe.
   Hydrolyse à chaud de l'échantillon par une solution d'hydroxyde de potassium en milieu éthanolique. Extraction par l'éther de pétrole et purification par l'acide sulfurique à 85 p. 100. Dosage de la vitamine E par chromatographie liquide haute performance (C.L.H.P.) sur colonne de gel de silice et détection U.V.. Les isomères b, d et g n'interfèrent pas sur le dosage.
   3. Réactifs.
   Les réactifs doivent être de qualité analytique. L'eau utilisée doit être de l'eau distillée ou de l'eau de pureté au moins équivalente.
   3.1. Ethanol à 95 p. 100 vol.
   3.2. Solution à 20 p. 100 (m/v) de pyrogallol dans l'éthanol (3.1).
   3.3. Solution à 50 p. 100 (m/v) d'hydroxyde de potassium.
   3.4. Ether de pétrole (ébullition 40 - 65 °C).
   3.5. Solution d'acide sulfurique à 85 p. 100 (v/v).
   3.6. Solutions étalon : solution mère à 1 000 mg/ml dedlatocophérol dans l'isooctane. Solution de travail à 50 p. 100 mg/ml dans l'isooctane.
   3.7. Phase mobile : mélange 99/l (v/v) d'isooctane et d'alcool isopropylique.
   4. Appareillage.
   Matériel courant de laboratoire, notamment :
   4.1. Rampe de chauffage (chauffe-ballon ou bain d'eau) avec réfrigérants à rodage.
   4.2. Ballons d'un litre à rodage adaptable aux réfrigérants.
   4.3. Ampoules à décanter de 500 ml.
   4.4. Appareil rotatif à évaporation sous vide.
   4.5. Ampoules à décanter de 125 ml.
   4.6. Appareil de C.L.H.P. avec détection par absorption U.V..
   4.7. Colonne de gel de silice de 10 mm (longueur 30 cm et 4 mm de diamètre intérieur) ou système équivalent donnant un facteur de capacité (k') de l'ordre de 0,7.
   5. Mode opératoire.
   5.1. Préparation de l'échantillon pour essai.
   5.1.1. Cas des produits secs :
   Tout ou partie de l'échantillon est broyé de façon à pouvoir passer à travers les mailles d'un tamis de 1 mm d'ouverture. Homogénéiser.
   5.1.2. Cas des aliments humides :
   Tout ou partie de l'échantillon est haché finement. Homogénéiser.
   Note - Les échantillons doivent être traités juste avant l'analyse. L'analyse ne doit pas être effectuée en lumière directe.
   5.2. Hydrolyse et extraction.
   Introduire 25 g de l'échantillon préparé et pesé à 0,01 g près dans un ballon de un litre (4.2). Ajouter successivement 10 ml de solution de pyrogallol (3.2), 70 ml d'éthanol (3.1) et 20 ml de solution d'hydroxyde de potassium (3.3). Chauffer durant trente minutes à 70 - 80 °C sous réfrigérant à reflux et laisser ensuite refroidir sous courant d'eau. Ajouter 80 ml d'eau et 250 ml d'éther de pétrole (3.4) exactement mesurés. Extraire par agitation pendant quatre à cinq minutes. Laisser décanter dans le ballon. Verser la phase organique supérieure dans une ampoule à décanter de 500 ml. Laver cette phase jusqu'à neutralité et éliminer les traces d'eau à l'aide de bandes de papier filtre. Evaporer sous vide 200 ml exactement mesurés. Reprendre le résidu par 20 ml d'éther de pétrole (3.4) mesurés à la pipette. Agiter l'extrait cinq minutes sur agitateur magnétique avec 5 ml de solution d'acide sulfurique (3.5). Laisser décanter dans le ballon. Verser la phase organique supérieure dans une ampoule à décanter de 125 ml (4.5). Laver cette phase jusqu'à neutralité et éliminer les traces d'eau à l'aide de bandes de papier filtre. C'est cet extrait qui sera injecté dans le chromatographe.
   5.3. Conditions de la chromatographie liquide haute performance.
   Débit de la phase mobile : 1 ml/minute ;
   Longueur d'onde de détection : 292 nm avec une lampe au Deutérium ou filtre à 280 nm avec lampe à vapeur de mercure ;
   Sensibilité du détecteur : 0,02 ou 0,01 suivant le type de détecteur ;
   Volumes injectés : 5 ml pour l'étalon et la quantité appropriée de la solution obtenue en 5.2.
   6. Mode de calcul et formule.
   La teneur en vitamine E exprimée en Unités Internationales par gramme d'échantillon est donnée par la formule suivante :
   (formule non reproduite, voir au Journal officiel).
   C et : concentration de la solution étalon ;
   A et A ech : surfaces du pic de l'étalon et de l'échantillon ;
   I et I ech : volumes de l'injection de la solution étalon et de l'échantillon ;
   S et S ech : sensibilités du détecteur pour l'étalon et l'échantillon ;
   Vi : volume d'extraction (250 ml dans la méthode) ;
   Vr : volume prélevé après extraction (200 ml dans la méthode) ;
   Vf : volume final après concentration (20 ml dans la méthode) ;
   P : prise d'essai ;
   1,097 : rapport des masses moléculaires de l'acétate de dlatocophérol au dlatocophérol.
   7. Remarques.
   7.1. Le dosage de la vitamine E peut être effectué à partir de l'extrait obtenu pour le dosage de la vitamine A. Cet extrait doit subir une purification par l'acide sulfurique comme indiqué dans la présente méthode.
   7.2. Si la mesure des surfaces s'effectue à l'aide d'un intégrateur branché sur la sortie intégration du détecteur, ne pas tenir compte dans le calcul du rapport des sensibilités.