Gaceta médica catalana (1889-06-30 00:00:00), página 12

rojo y su grosor varía entre \( \frac{1}{8} \) y \( \frac{1}{5} \) de su longitud. Los más son rectos, sólo algunos encorvados, y los extremos son generalmente redondeados. Por punto general son un poco más cortos y gruesos que los bacilos tuberculosos, en los líquidos presentan el movimiento molecular browniano, pero no tienen movimiento propio.

Especialmente bien y de un modo característico desarrollanse estos bacilos en la patata (telilla brillante de color canela) y en el suero sanguíneo que licuan. En la gelatina con carne y peptona casi no se desarrollan á la temperatura ordinaria; pero muy bien en la gelatina con leche y huevo, según el método de la Sra. Raskina, como también presentan un desarrollo muy característico en el agar agar con leche y peptona.

Por la inoculación de cultivos puros de bacilo de muermo, se ha conseguido infectar á caballos, ratones campestres y cobayas.

Si se tiene para el diagnóstico un nódulo fresco, basta investigar su contenido microscópicamente y por vía de los cultivos para demostrar allí la presencia de los bacilos, y para convencerse definitivamente de que los microbios obtenidos son realmente los del muermo y no algún otro, basta inocularlo á un ratón campestre porque este animal es sumamente sensible á semejante infección. Si se tiene una secreción de la nariz ó de úlceras de individuos sospechosos de muermo, puede inocularse esta secreción directamente á una cobaya, la cual enfermará de muermo si realmente se trata de esta enfermedad. Esta inoculación se recomienda precisamente porque la investigación microscópica y la obtención de un cultivo puro de una mezcla de microbios no es cosa fácil.

Los bacilos del muermo se coloran muy bien en el líquido de Löffler, tanto en los cortes como sobre cristales. También pueden colorarse en las disoluciones de fuxina ó violeta jenciana en agua de anilina mezcladas con partes iguales de una disolución de potasa cáustica al 1 por 1000, ó de una disolución de amoníaco á \( \frac{1}{2} \) por 100. Después de la coloración se lavan los cristales con ácido acético al 1 por 100, al que se ha añadido la cantidad suficiente de tropoelina para obtener un color amarillo débil, terminando la operación con el lavado del cristal con agua.

[Kühne recomienda para la investigación de los bacilos del muermo en los tegidos animales, en vista de las dificultades especiales de este problema, el siguiente procedimiento: Antes de meter los cortes en el color, se quita el alcohol lavándolos bien en agua; luego se dejan por 3 ó 4 minutos en el azul de metileno fenicado (agua 100, ácido fénico 5, alcohol 10, azul de metileno 1,5), después se descoloran en agua acidulada (con ácido clorhídrico), se desacidulan esmeradamente en agua destilada, se pasan rápidamente por alcohol, se colocan en aceite de anilina al que se hayan añadido de 6 á 8 gotas de esencia de trementina; finalmente se emplea esencia de trementina pura, jilol y bálsamo. En los cortes tratados según este procedimiento, los bacilos se presentan muy claramente, mientras que el tegido conserva poco color. Obtener una buena coloración de ambos factores á la vez le parece inasequible á Khüne. (Centralblatt für Bakteriologie und Parasiten Kunde, 1889, núm. 4).]

Fig. 15.
Bacilos de muermo; cultivo puro sobre suero sanguíneo. Disolución de violeta jenciana en alcohol débil.