»BILAG

FÆLLES TEKNISKE SPECIFIKATIONER FOR MEDICINSK UDSTYR TIL IN VITRO-DIAGNOSTIK

1. ANVENDELSESOMRÅDE

De i dette bilag fastsatte fælles tekniske specifikationer gælder for udstyr, der er opført i liste A i bilag II til direktiv 98/79/EF.

2. DEFINITIONER OG UDTRYK

(Diagnostisk) sensitivitet

Sandsynligheden for, at udstyret giver et positivt resultat ved tilstedeværelse af målmarkøren.

Sand positiv

En prøve, der vides at være positiv for målmarkøren, og som klassificeres korrekt af udstyret.

Falsk negativ

En prøve, der vides at være positiv for målmarkøren, og som fejlklassificeres af udstyret.

(Diagnostisk) specificitet

Sandsynligheden for, at udstyret giver et negativt resultat i målmarkørens fravær.

Falsk positiv

En prøve, der vides at være negativ for målmarkøren, og som fejlklassificeres af udstyret.

Sand negativ

En prøve, der vides at være negativ for målmarkøren, og som klassificeres korrekt af udstyret.

Analytisk sensitivitet

Analytisk sensitivitet kan udtrykkes som detektionsgrænsen, dvs. den mindste mængde af målmarkøren, som kan påvises præcist.

Analytisk specificitet

Metodens evne til alene at bestemme målmarkøren.

Nukleinsyre-amplifikationsteknikker (NAT)

Betegnelsen »NAT« anvendes om test til påvisning og/eller kvantificering af nukleinsyrer enten ved amplifikation af en målsekvens, amplifikation af et signal eller hybridisering.

Hurtigtest

Ved »hurtigtest« forstås kvalitativt eller semikvantitativt medicinsk udstyr til in vitro-diagnostik, som kun kan anvendes enkeltvis eller i små serier, og som involverer ikke-automatiserede metoder og er beregnet til at give et hurtigt resultat.

Robusthed

Robusthed er et mål for en analysemetodes evne til at forblive upåvirket af små, men tilsigtede ændringer i metodeparametrene og er desuden en indikation for metodens pålidelighed ved normal anvendelse.

Totalsystemfejlrate

Totalsystemfejlraten er fejlhyppigheden, når hele processen udføres efter fabrikantens forskrifter.

Verifikations-assay

Verifikations-assay anvendes til at få bekræftet et reaktivt resultat fra et screening-assay.

Virustyping-assay

Virustyping-assay anvendes til at foretage typebestemmelse med i forvejen kendte positive prøver, der ikke anvendes til primær infektionsdiagnose eller screening.

HIV-serokonversionsprøver

HIV-serokonversionsprøver betyder:

— p24 antigen- og/eller HIV RNA-positiv og

— genkendt af samtlige antistof-screeningtest og

— positive eller ubestemte verifikations-assays.

Tidlige HIV-serokonversionsprøver

Tidlige HIV-serokonversionsprøver betyder:

— p24 antigen- og/eller HIV RNA-positiv og

— ikke genkendt af samtlige antistof-screeningtest og

— ubestemte eller negative verifikations-assays.

3. FÆLLES TEKNISKE SPECIFIKATIONER (FTS) FOR PRODUKTER, DER ER OPFØRT PÅ LISTE A I BILAG II TIL DIREKTIV 98/79/EF

3.1. Fælles tekniske specifikationer for evaluering af reagensers og reagens-produkters ydeevne med hensyn til påvisning, verifikation og kvantificering i humant prøvemateriale af markører for HIV-infektion (HIV 1 og 2), HTLV I og II samt hepatitis B, C, D

Generelle principper

3.1.1. Udstyr til påvisning af virusinfektioner, bragt i omsætning til brug ved enten screenings- og/eller diagnosticeringstest, skal opfylde kravene til sensitivitet og specificitet i tabel 1. Se også punkt 3.1.11 vedrørende screening-assays.

3.1.2. Udstyr, der af fabrikanten er beregnet til testning af andre legemsvæsker end serum og plasma, f.eks. urin og spyt, skal opfylde de samme FTS-krav til sensitivitet og specificitet som serum- og plasmatest. Ved evalueringen af ydeevnen testes prøver fra de samme individer i de test, der skal godkendes, og i et hertil relateret serum- eller plasma-assay.

3.1.3. Udstyr, der af fabrikanten er bestemt til selvtestning, dvs. til anvendelse i et hjemligt miljø, skal opfylde de samme FTS-krav til sensitivitet og specificitet som det udstyr, der er beregnet til at anvendes af fagfolk. Relevante dele af evalueringen af ydeevnen skal udføres (eller gentages) af lægfolk med henblik på at vurdere udstyrets funktion og brugsanvisningerne.

3.1.4. Alle evalueringer af ydeevnen skal udføres på grundlag af en direkte sammenligning med et anerkendt udstyr, der repræsenterer det højeste tekniske niveau. Det udstyr, der anvendes som sammenligningsgrundlag, skal være forsynet med CE-mærkning, såfremt det er bragt i omsætning på tidspunktet for evalueringen af ydeevnen.

3.1.5. Såfremt der som led i en evaluering identificeres afvigende prøveresultater, skal disse resultater så vidt muligt efterprøves ved hjælp af f.eks.:

— evaluering af den afvigende prøve i yderligere testsystemer

— anvendelse af en alternativ metode eller markør

— gennemgang af patientens kliniske status og diagnose

— testning af opfølgningsprøver.

3.1.6. Ydeevneevaluering skal udføres på en population, der svarer til den europæiske befolkning.

3.1.7. Positive prøver, der anvendes i forbindelse med evaluering af ydeevnen, skal udvælges således, at de afspejler de forskellige stadier i den/de pågældende sygdom(me), forskellige antistofmønstre, forskellige genotyper, forskellige subtyper, mutanter osv.

3.1.8. Sensitivitet med sand positive prøver og serokonversionsprøver evalueres som følger:

3.1.8.1. Diagnostisk testsensitivitet under serokonversion skal repræsentere det højeste tekniske niveau. Resultaterne af yderligere prøvninger af de samme eller supplerende serokonversionspaneler skal, hvad enten de udføres af det bemyndigede organ eller fabrikanten, bekræfte de oprindelige data for evaluering af ydeevnen (se tabel 1). Serokonversionspaneler bør starte med en eller flere negative blodprøver med snævre tappeintervaller.

3.1.8.2. For udstyr til blodscreening (bortset fra HBsAg- og anti-HBc-test) skal alle sand positive prøver identificeres som positive af det udstyr, der skal forsynes med CE-mærkning (tabel 1). For så vidt angår HBsAg- og anti-HBc-test, skal det nye udstyr have en generel ydeevne, som mindst er på niveau med det anerkendte udstyrs (se punkt 3.1.4).

3.1.8.3. Hvad angår HIV-test: — skal alle HIV-serokonversionsprøver identificeres som positive — skal mindst 40 tidlige HIV-serokonversionsprøver testes. Resultaterne skal svare til det højeste tekniske niveau.

3.1.9. Evaluering af ydeevnen i forbindelse med screening-assays skal omfatte 25 positive (hvis sådanne findes, hvor det drejer sig om sjældne infektioner), »dagfriske« serum- og/eller plasmaprøver (≤ 1 dag efter prøvetagningen).

3.1.10. Negative prøver, der anvendes til evaluering af ydeevnen, skal defineres således, at de afspejler den målpopulation, prøven tager sigte på, f.eks. bloddonorer, hospitaliserede patienter, gravide kvinder osv.

3.1.11. Ved evaluering af ydeevnen i forbindelse med screening-assays (tabel 1) skal undersøgelsen vedrøre bloddonorpopulationer fra mindst to bloddonorcentre og bestå af konsekutive bloddonationer, som ikke er blevet udvalgt således, at de udelukker førstegangsdonorer.

3.1.12. Udstyret skal have en specificitet på mindst 99,5 % for bloddonationer, medmindre andet et angivet i de ledsagende tabeller. Specificiteten beregnes på grundlag af hyppigheden af gentagne reaktive (dvs. falsk positive) resultater hos bloddonorer, der er negative for målmarkøren.

3.1.13. Udstyret skal som led i evalueringen af ydeevnen evalueres med henblik på at fastslå effekten af potentielle interfererende stoffer. Hvilke potentielle interfererende stoffer der skal evalueres, vil til en vis grad afhænge af reagenssammensætningen og assay-opsætningen. Potentielle interfererende stoffer skal identificeres som led i den risikoanalyse, der skal foretages til opfyldelse af de væsentlige krav, der gælder for ethvert nyt udstyr; analysen kan f.eks. omfatte:

— prøver, der repræsenterer »beslægtede« infektioner

— prøver fra flergangsfødende, dvs. kvinder, som har haft mere end én graviditet, og reumatoidfaktor-positive patienter

— for rekombinante antigener, humane antistoffer mod bestanddele af ekspressionssystemet, f.eks. anti-E. coli eller antistoffer mod gær.

3.1.14. For udstyr, der af fabrikanten er beregnet til at anvendes sammen med serum og plasma, skal evalueringen af ydeevnen påvise serum/plasma-ækvivalens. Dette skal påvises for mindst 50 donationer (25 positive og 25 negative).

3.1.15. For udstyr, der er beregnet til at anvendes sammen med plasma, skal evalueringen af ydeevnen verificere udstyrets ydeevne under anvendelse af alle de antikoagulanser, der af fabrikanten angives at skulle anvendes med udstyret. Dette skal påvises for mindst 50 donationer (25 positive og 25 negative).

3.1.16. Som led i den krævede risikoanalyse skal totalsystemfejlraten, der fører til falsk negative resultater, bestemmes i gentagne assays af svagt positive prøver.

3.1.17. Hvis nyt medicinsk udstyr til in vitro-diagnostik henhørende under liste A i bilag II ikke specifikt er omfattet af den fælles tekniske specifikation, gælder den fælles tekniske specifikation for beslægtet udstyr. Beslægtet udstyr kan identificeres på forskelligt grundlag, f.eks. ved samme eller tilsvarende tilsigtet anvendelse eller ved samme risici.

3.2. Yderligere krav til kombinerede HIV-antistof-/antigen-test

3.2.1. Kombinerede HIV-antistof-/antigen-test til påvisning af HIV-antistoffer og p24-antigener, som også er angivet til anvendelse til påvisning af single p24-antigen, skal følge tabel 1 og 5, inklusive kriterierne for analytisk sensitivitet for p24-antigen.

3.2.2. Kombinerede HIV-antistof-/antigen-test til påvisning af HIV-antistoffer og p24-antigener, som ikke er angivet til anvendelse til påvisning af single p24-antigen, skal følge tabel 1 og 5, eksklusive kriterierne for analytisk sensitivitet for p24-antigen.

3.3. Yderligere krav til nukleinsyre-amplifikationsteknikker (NAT)

Kriterierne for evaluering af ydeevnen for NAT-assays er angivet i tabel 2.

3.3.1. For målsekvensamplifikations-assays skal en funktionskontrol for hvert prøvemateriale (intern kontrol) afspejle det højeste tekniske niveau. Denne kontrol skal så vidt muligt foretages under hele processen, dvs. ved ekstraktion, amplifikation/hybridisering og påvisning.

3.3.2. Den analytiske sensitivitets- eller detektionsgrænse for NAT-assays skal udtrykkes ved 95 % positiv cut-off værdi. Dette er den komponentkoncentration, hvor 95 % af testkørslerne giver positive resultater efter seriefortyndinger af et internationalt referencemateriale, f.eks. en WHO-standard eller et kalibreret referencemateriale.

3.3.3. Genotype-detektion skal påvises ved passende validering af primer- eller sondedesign og skal desuden også valideres ved testning af karakteriserede genotypeprøver.

3.3.4. Resultaterne af kvantitative NAT-assays skal kunne spores til internationale standarder eller kalibrerede referencematerialer, hvis sådanne findes, og udtrykkes i internationale enheder, der benyttes inden for det givne anvendelsesområde.

3.3.5. NAT-assays kan benyttes til at påvise virus i antistof-negative prøver, dvs. præ-serokonversionsprøver. Virus i immunkomplekser kan udvise en anden adfærd end frie virus, f.eks. ved centrifugering. Det er derfor vigtigt, at robusthedsundersøgelser omfatter antistof-negative (præ-serokonversions-) prøver.

3.3.6. Ved undersøgelse af eventuel carry-over-effekt skal robusthedsundersøgelserne omfatte mindst fem testkørsler med alternerende højpositive og negative prøver. De højpositive prøver skal omfatte prøver med naturligt forekommende høj virustiter.

3.3.7. Totalsystemfejlraten, der fører til falsk negative resultater, skal bestemmes ved testning af svagt positive prøver. Svagt positive prøver skal indeholde en viruskoncentration svarende til 3 gange den 95 % positive cut-off viruskoncentration.

3.4. Fælles tekniske specifikationer for fabrikantens frigivelsesprøvning af reagenser og reagensprodukter med hensyn til påvisning, verifikation og kvantificering i humant prøvemateriale af markører for HIV-infektion (HIV 1 og 2), HTLV I og II samt hepatitis B, C, D (kun immunologiske assays)

3.4.1. Fabrikantens kriterier for frigivelsesprøvning skal sikre, at enhver batch konsekvent identificerer de relevante antigener, epitoper og antistoffer.

3.4.2. Fabrikantens batchfrigivelsesprøvning skal omfatte mindst 100 prøver, der er negative for den relevante analysand.

3.5. Fælles tekniske specifikationer for evaluering af reagensers og reagens-produkters ydeevne med hensyn til bestemmelse af følgende blodtypeantigener: ABO-system: ABO1 (A), ABO2 (B), ABO3 (A,B), Rh-system: RH1 (D), RH2 (C), RH3 (E), RH4 (c), RH5 (e) og Kell: KEL1 (K)

Kriterier for evaluering af reagensers og reagensprodukters ydeevne med hensyn til bestemmelse af følgende blodtypeantigener: ABO-system: ABO1 (A), ABO2 (B), ABO3 (A, B), Rh-system: RH1 (D), RH2 (C), RH3 (E), RH4 (c), RH5 (e) og Kell: KEL1 (K) findes i tabel 9.

3.5.1. Alle evalueringer af ydeevne skal gennemføres på grundlag af en direkte sammenligning med et anerkendt udstyr på højeste tekniske niveau. Det udstyr, der anvendes til sammenligning, skal være forsynet med CE-mærkning, hvis det er bragt i omsætning på tidspunktet for evalueringen af ydeevnen.

3.5.2. Hvis der som led i en evaluering identificeres afvigende testresultater, skal diskrepanserne så vidt muligt afklares ved hjælp af f.eks.:

— evaluering af den afvigende prøve i yderligere testsystemer

— anvendelse af en alternativ metode.

3.5.3. Evalueringer af ydeevne skal udføres på en population, der svarer til den europæiske befolkning.

3.5.4. Positive prøver, der anvendes i forbindelse med evaluering af ydeevnen, skal udvælges således, at de afspejler variant- og svag antigenekspression.

3.5.5. Udstyret skal som led i evalueringen af ydeevnen evalueres med henblik på at fastslå effekten af potentielle interfererende stoffer. Hvilke potentielle interfererende stoffer der skal evalueres, vil til en vis grad afhænge af reagenssammensætningen og assay-opsætningen. Potentielle interfererende stoffer skal identificeres som led i den risikoanalyse, der skal foretages til opfyldelse af de væsentlige krav, der gælder for ethvert nyt udstyr.

3.5.6. For udstyr, der er beregnet til at anvendes sammen med plasma, skal ydeevneevalueringen verificere udstyrets ydeevne under anvendelse af alle de antikoagulanser, som af fabrikanten angives at skulle anvendes sammen med udstyret. Dette skal påvises for mindst 50 donationer.

3.6. Fælles tekniske specifikationer for fabrikantens frigivelsesprøvning af reagenser og reagensprodukter med hensyn til bestemmelse af følgende blodtypeantigener: ABO-system: ABO1 (A), ABO2 (B), ABO3 (A,B), Rh-system: RH1 (D), RH2 (C), RH3 (E), RH4 (c), RH5 (e) og Kell: KEL1 (K)

3.6.1. Kriterierne for fabrikantens frigivelsestestning skal sikre, at enhver batch konsekvent identificerer de relevante antigener, epitoper og antistoffer.

3.6.2. Kravene til fabrikantens batchfrigivelsesprøvning er angivet i tabel 10.

Tabel 1

Screening-assays: anti-HIV 1 og 2, anti-HTLV I og II, anti-HCV, HBsAg, anti-HBc

anti-HIV-1/2 anti-HTLV-I/II anti-HCV HBsAg anti-HBc Diagnostisk sensitivitet Positive prøver 400 HIV-1 100 HIV-2 inkl. 40 non-B-subtyper, alle foreliggende HIV/1- subtyper bør være repræsenteret med mindst 3 prøver pr. subtype 300 HTLV-I 100 HTLV-II 400 (positive prøver) inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier afspejlende forskellige antistofmønstre. Genotype 1-4: > 20 prøver pr. genotype (inkl. non-a subtyper af genotype 4); 5: > 5 prøver 6: såfremt sådanne foreligger 400 inkl. subtyper 400 inkl. evaluering af andre HBV-markører Serokonversionspaneler 20 paneler 10 yderligere paneler (hos bemyndiget organ eller fabrikant) Skal defineres, når de foreligger 20 paneler 10 yderligere paneler (hos bemyndiget organ eller fabrikant) 20 paneler 10 yderligere paneler (hos bemyndiget organ eller fabrikant) Skal defineres, når de foreligger Analytisk sensitivitet Standarder 0,130 IU/ml (anden international standard for HBsAg, subtype adw2, genotype A, NIBSC-kode: 00/588) Specificitet Ikke-selekterede donorer (inkl. førstegangsdonorer) 5 000 5 000 5 000 5 000 5 000 Hospitaliserede patienter 200 200 200 200 200 Potentielt krydsreagerende blodprøver (RF+, beslægtede virus, gravide kvinder osv.) 100 100 100 100 100





Tabel 2

NAT-assays for HIV 1, HCV, HBV og HTLV I og II (kvalitative og kvantitative test; ikke molekylærtypebestemmelse)

HIV 1 HCV HBV HTLV I/II Acceptkriterier NAT Kvalitativ Kvantitativ Kvalitativ Kvantitativ Kvalitativ Kvantitativ Kvalitativ Kvantitativ Som for HIV kvantitativ test Som for HIV kvantitativ test Som for HIV kvantitativ test Sensitivitet Detektionsgrænse Påvisning af analytisk sensitivitet (IU/ml; defineret på grundlag af WHO-standarder eller kalibrerede referencematerialer) I overensstemmelse med EP-valideringsguideline (1) flere fortyndingsserier i borderlinekoncentration; statistisk analyse (f.eks. Probit-analyse) på grundlag af mindst 24 replikater, beregning af 95 % cut-off værdi Detektionsgrænse: som for kvalitative test; kvantificeringsgrænse: fortyndinger (halv log 10 eller mindre) af kalibrerede referencepræparater, definition af nedre og øvre kvantificeringsgrænse, præcision, nøjagtighed, »lineær« målespektrum, »dynamisk spektrum«. Reproducerbarhed ved forskellige koncentrationsniveauer skal vises I overensstemmelse med EP-valideringsguideline (1): flere fortyndingsserier i borderlinekoncentration; statistisk analyse (f.eks. Probitanalyse) på grundlag af mindst 24 replikater, beregning af 95 % cut-off værdi I overensstemmelse med EP-valideringsguideline (1) flere fortyndingsserier i borderlinekoncentration; statistisk analyse (f.eks. Probitanalyse) på grundlag af mindst 24 replikater, beregning af 95 % cut-off værdi I overensstemmelse med EP-valideringsguideline (1) flere fortyndingsserier i borderlinekoncentration; statistisk analyse (f.eks. Probitanalyse) på grundlag af mindst 24 replikater, beregning af 95 % cut-off værdi Genotype/subtypepåvisning/kvantificeringseffektivitet Mindst 10 prøver pr. subtype (for så vidt som de foreligger) Fortyndingsserier af alle relevante genotyper/subtyper, fortrinsvis af referencematerialer, for så vidt som sådanne findes Mindst 10 prøver pr. genotype (for så vidt som de foreligger) For så vidt som kalibrerede genotype-referencematerialer foreligger For så vidt som kalibrerede genotype-referencematerialer foreligger Cellekultur-supernatanter (kan erstatte sjældne HIV 1-subtyper). Transkripter eller plasmider kvantificeret ved egnede metoder kan anvendes Ifølge EP-valideringsguideline (1) kan in vitro-transkripter være en mulighed, for så vidt som kalibrerede subtypereferencematerialer foreligger Ifølge EP-valideringsguideline (1) kan in vitro-transkripter være en mulighed, for så vidt som kalibrerede subtypereferencematerialer foreligger Ifølge EP-valideringsguideline (1) kan in vitro-transkripter være en mulighed, for så vidt som kalibrerede subtypereferencematerialer foreligger Ifølge EP-valideringsguideline (1) kan in vitro-transkripter være en mulighed, for så vidt som kalibrerede subtypereferencematerialer foreligger Diagnostisk specificitet negative prøver 500 bloddonorer 100 bloddonorer 500 bloddonorer 500 bloddonorer 500 individuelle bloddonationer Potentielle krydsreaktive markører Ved passende assays-designeviden (f.eks. sekvenssammenligning) og/eller testning af mindst 10 humane retrovirus (f.eks. HTLV)-positive prøver Som for kvalitative test Ved assays-design og/eller testning af mindst 10 humane flavivirus (f.eks. HGV, YFV)-positive prøver Ved assays-design og/eller testning af mindst 10 andre DNA virus-positive prøver Ved assays-design og/eller testning af mindst 10 humane retrovirus (f.eks. HIV)-positive prøver Robusthed Som for kvalitative test Krydskontaminering Mindst 5 testkørsler med alternerende højpositive (der vides at forekomme naturligt) og negative prøver Mindst 5 testkørsler med alternerende højpositive (der vides at forekomme naturligt) og negative prøver Mindst 5 testkørsler med alternerende højpositive (der vides at forekomme naturligt) og negative prøver Mindst 5 testkørsler med alternerende højpositive (der vides at forekomme naturligt) og negative prøver Inhibition Intern kontrol, fortrinsvis under hele NAT-proceduren Intern kontrol, fortrinsvis under hele NAT-proceduren Intern kontrol, fortrinsvis under hele NAT-proceduren Intern kontrol, fortrinsvis under hele NAT-proceduren Totalsystemfejlrate, der fører til falsk neg. resultater Mindst 100 virus-spikeprøver med 3 × 95 % pos. cut-off koncentration Mindst 100 virus-spikeprøver med 3 × 95 % pos. cut-off koncentration Mindst 100 virus-spikeprøver med 3 × 95 % pos. cut-off koncentration Mindst 100 virus-spikeprøver med 3 × 95 % pos. cut-off koncentration 99/100 assays positive Bemærk: Acceptkriteriet for »totalsystemfejlrate, der fører til falsk neg. Resultater« er 99/100 assays positive. For kvantitative NAT skal der undersøges mindst 100 positive prøver, som afspejler de sædvanlige forhold hos brugerne (f.eks. inden præselektion af prøver). Sideløbende hermed skal der frembringes komparative resultater med andre NAT-testsystemer. For kvalitative NAT skal der undersøges mindst 10 serokonversionspaneler. Sideløbende hermed skal der genereres komparative resultater med andre NAT-testsystemer.





Tabel 3

Hurtigtest: anti-HIV 1 og 2, anti-HCV, HBsAg, anti-HBc, anti-HTLV I og II

anti-HIV 1/2 anti-HCV HBsAg anti-HBc anti-HTLV I/II Acceptkriterier Diagnostisk sensitivitet Positive prøver Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Serokonversionspaneler Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Samme kriterier som for screening-assays Diagnostisk specificitet Negative prøver 1 000 bloddonationer 1 000 bloddonationer 1 000 bloddonationer 1 000 bloddonationer 1 000 bloddonationer ≥ 99 % (anti-HBc: ≥ 96 %) 200 kliniske prøver 200 kliniske prøver 200 kliniske prøver 200 kliniske prøver 200 kliniske prøver 200 prøver fra gravide kvinder 200 prøver fra gravide kvinder 200 prøver fra gravide kvinder 200 prøver fra gravide kvinder 100 potentielt interfererende prøver 100 potentielt interfererende prøver 100 potentielt interfererende prøver 100 potentielt interfererende prøver 100 potentielt interfererende prøver





Tabel 4

Verifikations-/supplerende assays for anti-HIV 1 og 2, anti-HTLV I og II, anti-HCV, HBsAg

anti-HIV verifikations-assay anti-HTLV verifikations-assay HCV supplerende assay HBsAg verifikations-assay Acceptkriterier Diagnostisk sensitivitet Positive prøver 200 HIV-1 og 100 HIV-2 200 HTLV-I og 100 HTLV-II 300 HCV (positive prøver) 300 HBsAg Korrekt identifikation som positiv (eller ubestemt), ikke negativ Inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier, som afspejler forskellige antistofmønstre Inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier, som afspejler forskellige antistofmønstre. Genotype 1-4: > 20 prøver (inkl. non-a subtyper af genotype 4) 5: > 5 prøver 6: såfremt sådanne foreligger Inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier 20 »stærkt positive« prøver (> 26 IU/ml); 20 prøver inden for cut-offspektret Serokonversionspaneler 15 serokonversionspaneler/lavtiterpaneler 15 serokonversionspaneler/lavtiterpaneler 15 serokonversionspaneler/lavtiterpaneler Analytisk sensitivitet Standarder Anden internationale standard for HBsAg, HBsAg, subtype adw2, genotype A, NIBSC-kode: 00/588 Diagnostisk specificitet Negative prøver 200 bloddonationer 200 bloddonationer 200 bloddonationer 10 falsk positive, for så vidt som de foreligger fra ydeevneevalueringen af det tilsvarende screening-assay (2). Ingen falsk positive resultater (2)/ingen neutralisation 200 kliniske prøver, herunder fra gravide kvinder 200 kliniske prøver, herunder fra gravide kvinder 200 kliniske prøver, herunder fra gravide kvinder 50 potentielt interfererende prøver, herunder prøver med ubestemte resultater i andre verifikations-assays 50 potentielt interfererende prøver, herunder prøver med ubestemte resultater i andre verifikations-assays 50 potentielt interfererende prøver, herunder prøver med ubestemte resultater i andre verifikations-assays 50 potentielt interfererende prøver





Tabel 5

HIV 1-antigen

HIV-1 Antigen-assay Acceptkriterier Diagnostisk sensitivitet Positive prøver 50 HIV 1 Ag-positive 50 cellekultur-supernatanter omfattende forskellige HIV 1-subtyper og HIV 2 Korrekt identifikation (efter neutralisation) Serokonversionspaneler 20 serokonversionspaneler/lavtiterpaneler Analytisk sensitivitet Standarder HIV-1 p24-antigen, første internationale referencereagens, NIBSC-kode: 90/636 ≤ 2 IU/ml Diagnostisk specificitet 200 bloddonationer 200 kliniske prøver 50 potentielt interfererende prøver ≥ 99,5 % efter neutralisation





Tabel 6

Serotyping- og genotyping-assay: HCV

HCV-serotyping- og genotyping-assay Acceptkriterier Diagnostisk sensitivitet Positive prøver 200 (positive prøver) Inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier, som afspejler forskellige antistofmønstre. Genotype 1-4: ≥ 20 prøver (inkl. non-a subtyper af genotype 4) 5: ≥ 5 prøver 6: såfremt sådanne foreligger ≥ 95 % overensstemmelse mellem serotyping og genotyping ≥ 95 % overensstemmelse mellem genotyping og sekvensering Diagnostisk specificitet Negative prøver 100





Tabel 7

HBV-markører: anti-HBs, anti-HBc IgM, anti-HBe, HBeAg

anti-HBs anti-HBc IgM anti-HBe HBeAg Acceptkriterier Diagnostisk sensitivitet Positive prøver 100 vaccinerede 200 200 200 ≥ 98 % 100 naturligt inficerede personer Inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier (akut/kronisk osv.) Acceptkriterierne anvendes kun på prøver fra akut infektionsstadie Inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier (akut/kronisk osv.) Inkl. prøver fra forskellige infektionsstadier (akut/kronisk osv.) Serokonversionspaneler 10 opfølgninger eller anti-HBs-serokonversioner Når de foreligger Analytisk sensitivitet Standarder WHO’s første internationale referencepræparat 1977; NIBSC, Det Forenede Kongerige HBe — Referenzantigen 82; PEI Tyskland Anti-HBs: < 10 mIU/ml Diagnostisk specificitet Negative prøver 500 bloddonationer 200 bloddonationer 200 bloddonationer 200 bloddonationer ≥ 98 % inkl. kliniske prøver 50 potentielt interfererende prøver 200 kliniske prøver 50 potentielt interfererende prøver 200 kliniske prøver 50 potentielt interfererende prøver 200 kliniske prøver 50 potentielt interfererende prøver





Tabel 8

HDV-markører: anti-HDV, anti-HDV IgM, Delta-antigen

anti-HDV anti-HDV IgM Delta-antigen Acceptkriterier Diagnostisk sensitivitet Positive prøver 100 50 10 ≥ 98 % Med specificering af HBV-markører Med specificering af HBV-markører Med specificering af HBV-markører Diagnostisk specificitet Negative prøver 200 200 200 ≥ 98 % Inkl. kliniske prøver Inkl. kliniske prøver Inkl. kliniske prøver 50 potentielt interfererende prøver 50 potentielt interfererende prøver 50 potentielt interfererende prøver





Tabel 9

Blodtypeantigener i blodtypesystemerne ABO, Rh og Kell

1 2 3 Specificitet Antal test pr. anbefalet metode Samlet antal prøver, der skal testes i forbindelse med et produkt, der skal bringes i omsætning Samlet antal prøver, der skal testes i forbindelse med en ny sammensætning eller ved anvendelse af velkarakteriserede reagenser Anti-ABO1 (anti-A), anti-ABO2 (anti-B), anti-ABO3 (anti-A,B) 500 3 000 1 000 Anti-RH1 (anti-D) 500 3 000 1 000 Anti-RH2 (anti-C), anti-RH4 (anti-c), anti-RH3 (anti-E) 100 1 000 200 Anti-RH5 (anti-e) 100 500 200 Anti-KEL1 (anti-K) 100 500 200

Acceptkriterier:

Alle de ovenanførte reagenser skal vise testresultater, der svarer til anerkendte reagenser med acceptabel ydeevne med hensyn til udstyrets angivne reaktionsevne. For anerkendte reagenser, hvor anvendelsesområdet er blevet ændret eller udvidet, bør der foretages yderligere testning i overensstemmelse med kravene i kolonne 1 (ovenfor).

Ydeevneevalueringen af anti-D-reagenser skal omfatte test for en række svage RH1 (D)- og partielle RH1 (D)-prøver, afhængigt af produkternes formål.

Kvalitetskrav:

Kliniske prøver: : 10 % af testpopulationen Neonatale prøver: : > 2 % af testpopulationen ABO-prøver: : > 40 % A,B-positive »svag D«: : > 2 % af RH1 (D)-positive

Tabel 10

Batchfrigivelseskriterier for reagenser og reagensprodukter til bestemmelse af antigener for blodtypesystemerne ABO, Rh og Kell

Krav til specificitetstestning for den enkelte reagens

1. Testreagenser

Blodtypereagenser Mindsteantal kontrolceller, der skal testes Positive reaktioner Negative reaktioner A1 A2B Ax B 0 Anti-ABO1 (anti-A) 2 2 2 (3) 2 2 B A1B A1 0 Anti-ABO2 (anti-B) 2 2 2 2 A1 A2 Ax B 0 Anti-ABO3 (anti-AB) 2 2 2 2 4 R1r R2r Svag D r’r r’’r rr Anti-RH2 (anti-C) 2 2 2 (3) 1 1 1 R1R2 R1r r’r R2R2 r’’r rr Anti-RH4 (anti-c) 2 1 1 1 1 1 R1R2 R1r r’r R1R1 Anti-RH4 (anti-c) 1 2 1 3 R1R2 R2r r’’r R1R1 r’r rr Anti-RH3 (anti-E) 2 1 1 1 1 1 R1R2 R2r r’’r R2R2 Anti-RH5 (anti-e) 2 1 1 3 Kk kk Anti-KEL1 (anti-K) 4 3 Bemærk: Polyklonale reagenser skal testes i forhold til et bredere cellepanel for at bekræfte specificiteten og udelukke tilstedeværelse af uønskede kontaminerende antistoffer.

Acceptkriterier:

Hver reagensbatch skal udvise entydigt positive eller negative resultater ved alle anbefalede teknikker i overensstemmelse med de resultater, der er opnået på grundlag af data for ydeevneevalueringen.

2. Kontrolmateriale (røde celler)

Fænotypen af røde celler, der anvendes ved kontrol af de ovenanførte blodtypereagenser, bør bekræftes ved anvendelse af anerkendt udstyr.«