1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 1
Dette dokument er et dokumentationsredskab, og institutionerne påtager sig intet ansvar herfor
►B KOMMISSIONENS TREDJE DIREKTIV
af 27. april 1972
om fastsættelse af fællesskabsanalysemetoder til officiel kontrol af foderstoffer
(72/199/EØF)
(EFT L 123 af 29.5.1972, s. 6)
Berigtiget ved:
►C1Berigtigelse, EFT L 320 af 27.11.1980, s. 43 (72/199/EØF)
▼B
KOMMISSIONENS TREDJE DIREKTIV
af 27. april 1972
om fastsættelse af fællesskabsanalysemetoder til officiel kontrol af
foderstoffer
(72/199/EØF)
KOMMISSIONEN FOR DE EUROPÆISKE FÆLLESSKABER HAR —
under henvisning til traktaten om oprettelse af Det europæiske økono-
miske Fællesskab,
under henvisning til Rådets direktiv af 20. juli 1970 om indførelse af
fællesskabsregler for prøveudtagning og fælleskabsanalysemetoder til
den officielle kontrol af foderstoffer(1), særlig artikel 2, og
ud fra følgende betragtninger:
Ovennævnte direktiv bestemmer, at officielle kontrolforanstaltninger
vedrørende foderstoffer med henblik på at konstatere, om de i henholdtil administrativt eller ved lov fastsatte bestemmelser foreskrevne betin-gelser med hensyn til foderstoffers beskaffenhed og sammensætning eropfyldt, foretages under anvendelse af fællesskabsregler for prøveud-
tagning og fællesskabsanalysemetoder;
ved Kommissionens direktiver nr. 71/250/EØFaf 15. juni 1971(
2)o g
nr. 71/393/EØFaf 18. november 1971(3) er allerede en række analyse-
metoder fastlagt; det arbejde, der i mellemtiden er udført, er nu så vidt
fremskredet, at en 3. serie analysemetoder bør fastlægges;
de i dette direktiv fastsatte foranstaltninger er i overensstemmelse med
udtalelse fra Den stående Komité for foderstoffer —
Artikel 1
Medlemsstaterne foreskriver, at analyser i forbindelse med officiel
kontrol af foderstoffer med hensyn til disses indhold af stivelse, råpro-tein, pepsin- og saltsyreopløseligt råprotein og fri og total gossypolsamt med hensyn til pepsinaktiviteten udføres efter de i bilag I til dettedirektiv beskrevne metoder.
De almindelige bestemmelser i første del (indledning) af bilaget til
Kommissionens første direktiv nr. 71/250/EØFaf 15. juni 1971 omfastsættelse af fællesskabsanalysemetoder til officiel kontrol af foder-stoffer finder anvendelse på de i bilag I til dette direktiv beskrevne
metoder.
Artikel 2
Medlemsstaterne foreskriver, at analyser i forbindelse med officiel
kontrol af foderstoffer med henblik på påvisning og identifikation af
antibiotika inden for tetracyklingruppen samt med hensyn til foderstof-fernes indhold af klortetracyklin, oxytetracyklin, tetracyklin,oleandomycin, tytosin og virginiamycin udføres efter de i bilag II tildette direktiv beskrevne metoder.
De almindelige bestemmelser i første del (indledning) af bilaget til
Kommissionens første direktiv nr. 71/250/EØFaf 15. juni 1971 medundtagelse af den del, der vedrører forberedelse af analyseprøven,finder anvendelse på de i bilag II til dette direktiv beskrevne metoder.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 2
(1) EFT nr. L 170 af 3.8.1970, s. 2.
(2) EFT nr. L 155 af 12.7.1971, s. 13.
(3) EFT nr. L 279 af 20.12.1971, s. 7.
▼B
Artikel 3
Senest 1. juli 1973 bringer medlemsstaterne de nødvendige administra-
tivt eller ved lov fastsatte bestemmelser i anvendelse for at efterkomme
dette direktivs bestemmelser. De underretter straks Kommissionen
herom.
Artikel 4
Dette direktiv er rettet til medlemsstaterne.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 3
▼B
BILAG I
1.BESTEMMELSE AF STIVELSE
— polarimetrisk metode —
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af indholdet af stivelse og nedbrydningspro-
dukter heraf med høj molekylvægt i foderstoffer med undtagelse af sådanne,
som indeholder snitter og diffusionssnitter af roer, tørrede roeblade og -toppe,
kartoffelpulp, tørgær, inulinholdige produkter (f. eks. jordskoksnitter og -mel)
eller fedtegrever.
2.Princip
Metoden er baseret på en dobbelt bestemmelse. Ved den første bestemmelse
behandles prøven i varm tilstand med fortyndet saltsyre. Efter klaring og
filtrering måles opløsningens optiske drejning polarimetrisk.
Ved den anden bestemmelse ekstraheres prøven med ethanol 40 %. Efter
behandling af filtratet med saltsyre klares og filtreres og den optiske drejning
måles under samme betingelser som ved den første bestemmelse.
Forskellen mellem de to målinger, multipliceret med en kendt faktor, giver
prøvens stivelsesindhold.
3.Reagenser
3.1 Saltsyre 25 %, mf. 1,126 (w/w).
3.2 Saltsyre 1,128 % (w/v).
Koncentrationen skal kontrolles ved titrering med 0,1 N natriumhydroxy-
dopløsning under tilstedeværelse af metylrødt 0,1 % (w/v) i ethanol 94 %
(v/v). 10 ml = 30,94 ml 0,1 N NaOH.
3.3 Carrez-opløsning I: 21,9 g zinkacetat Zn (CH3COO)2·2H2Oo g3g
iseddike opløses i vand, og der fyldes op med vand til 100 ml.
3.4 Carrez-opløsning II: 10,6 g kaliumhexacyanoferrat, K4(Pe(ON)6)·3H2O
opløses i vand, og der fyldes op med vand til 100 ml.
3.5 Ethanol 40 % (v/v), mf. 0,948 ved 20º C.
4.Apparatur
4.1 250 ml Erlenmeyerkolbe med tilsleben prop og tilbageløbskøler.
4.2 Polarimeter eller saccharimeter.
5.Udførelse
5.1Tilberedning af prøven
Prøven skal formales så fint, at den passerer en sigte med runde huller
fuldstændigt (huldiameter 0,5 mm).
5.2Bestemmelse af den totale optiske drejning (P eller S) (se bemærkning
7.1)
2,5 g af prøven afvejes med 1 mg nøjagtighed i en 100 ml målekolbe, og
der tilsættes 25 ml saltsyre (3.2). Kolben rystes, indtil substansen er godt
fordelt; derefter tilsættes yderligere 25 ml saltsyre (3.2). Til slut
anbringes kolben i et kogende vandbad. I de første 3 minutter rystes
kolben kraftigt og med regelmæssige mellemrum for at forhindre klump-
dannelse. Vandmængden i vandbadet skal være tilstrækkelig til fortsat at
holde vandet i kog, når kolben sænkes ned. Under omrystningen må
kolben ikke tages op af vandet. Efter nøjagtig 15 minutter tages kolben
op af vandbadet, hvorefter der tilsættes 30 ml koldt vand og straks
afkøles til 20º C.
Der tilsættes 5 ml Carrez-opløsning I (3.3) og rystes 1 minut; umiddel-
bart derefter tilsættes 5 ml Carrez-opløsning II (3.4), og der rystes atter
1 minut. Derpå fyldes op med vand til mærket, omrystes og filtreres.
Såfremt filtratet ikke er fuldstændig klart, hvilket sjældent forekommer,
skal bestemmelsen gentages med større mængder af Carrez-opløsnin-
gerne I og II, f. eks. 10 ml.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 4
▼B
Umiddelbart derefter måles opløsningens optiske drejning i et 200 mm
rør med et polarimeter eller et saccharimeter.
5.3Bestemmelse af den optiske drejning (P ′eller S ′) for de i ethanol 40 %
opløselige substanser.
5 g af prøven afvejes med 1 mg nøjagtighed i en 100 ml målekolbe og
der tilsættes ca. 80 ml ethanol (3.5) (se bemærkning 7.2). Derpå
henstilles kolben 1 time ved rumtemperatur.Under henstanden rystes
kolben kraftigt seks gange, således at substansen blandes godt med etha-
nolen. Der fyldes op med ethanol (3.5) til mærket, omrystes og filtreres.
50 ml af filtratet (= 2,5 g af prøven) afpipetteres i en 250 ml Erlen-
meyerkolbe og der tilsættes 2,1 ml saltsyre (3.1); kolben rystes kraftigt,
sluttes til en tilbagekøbskøler og sættes i et bad med kogende vand. Efter
nøjagtig 15 minutter tages Erlenmeyerkolben op af vandbadet og
indholdet skylles over i en 100 ml målekolbe med en lille mængde koldt
vand; umiddelbart herefter afkøles til en temperatur på 20º C.
Derpå klares med Carrez-opløsningerne I (3.3) og II (3.4), fyldes op med
vand til mærket, omrystes og filtreres, og den optiske drejning måles
som beskrevet under 5.2 andet og tredje afsnit.
6.Beregning af resultaterne
Indholdet af stivelse i procent af prøven beregnes som følger:
6.1Polarimetriske målinger
Stivelses /C0procent ¼2000 /C1P/C0P0ðÞ
αðÞ20º
D
P = total optisk drejning i cirkelgrader.
P′ = optisk drejning i cirkelgrader af de i ethanol 40 %
opløselige substanser.
αðÞ20ºD = den rene stivelses specifikke drejningsevne.
Til denne faktor anvendes ifølge aftale nedenstående værdier:
+ 185,9º: risstivelse,
+ 185,4º: kartoffelstivelse,
+ 184,6º: majsstivelse,
+ 182,7º: hvedestivelse,
+ 181,5º: bygstivelse,+ 181,3º: havrestivelse,
+ 184,0º: andre stivelsesarter samt stivelsesblandinger i foder-
blandinger.
6.2Saccharimetriske målinger
Stivelses /C0procent ¼2000
αðÞ20º
D/C12N/C10;665 ðÞ S/C0S0ðÞ
100¼26;6N S /C0S0ðÞ
αðÞ20º
D
S = total optisk drejning i saccharimeter-grader.
S′= optisk drejning i saccharimeter-grader af de i ethanol 40 %
opløselige substanser.
N = vægt af saccharose i g, som i 100 ml vand ved en lagtykkelse
på 200 mm giver en optisk drejning på 100 saccharimeter-
grader. Denne vægt varierer alt efter saccharimetertype:
16,29 g ved franske saccharimetre,26,00 g ved tyske saccharimetre,
20,00 g ved blandede saccharimetre.
αðÞ
20º
D= den rene stivelses specifikke drejningsevne (se 6.1).
6.3Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved én og samme prøve
ved indhold på mindre end 40 % stivelse ikke være mere end 0,4 %
absolut, ved indhold på 40 % og mere ikke over 1 % relativt.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 5
▼C1
▼B
▼B
7.Bemærkninger
7.1 Indeholder prøven mere end 6 % karbonater, beregnet som kalciumkar-
bonat, skal disse for bestemmelsen af den totale optiske drejning
destrueres med den hertil nødvendige mængde af fortyndet svovlsyre.
7.2 Ved produkter med højt laktoseindhold, f. eks. vallepulver eller skum-
metmælkspulver, anvendes efter tilsætning af 80 ml ethanol (3.5)
følgende fremgangsmåde:
Målekolben forsynes med en tilbageløbskøler og nedsænkes i 30
minutter i et vandbad på 50º C. Efter afkøling fortsættes som beskrevet
under 5.3.
2.BESTEMMELSE AF RÅPROTEIN
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader konventionel udregning af indholdet af råprotein i foder-
stoffer på basis af kvælstofindholdet (Kjeldahl).
2.Princip
Prøven destrueres i våd tilstand. Den sure nedbrydningsrest gøres alkalisk
med en natriumhydroxydopløsning. Den frigjorte ammoniak fraskilles ved
destillation og opsamles i en bestemt mængde svovlsyre, hvis overskud
titreres med en natriumhydroxydopløsning.
3.Reagenser
3.1 Kaliumsulfat p. a.
3.2 Katalysator: Kobber(II)-oxyd CuO p.a. eller krystalliseret kobbersulfat
CuSO4·5H2O p.a. eller kviksølv eller kviksølvoxyd HgO p.a.
3.3 Zink p.a., granuleret
3.4 Svovlsyre p.a., mf. 1,84
3.5 0,1 N svovlsyre3.6 0,5 N svovlsyre3.7 Metylrødt-indikator: 300 mg metylrødt opløses i 100 ml ethanol
95—96 % (v/v)
3.8 Natriumhydroxydopløsning 40 % (w/v)3.9 0,1 N natriumhydroxydopløsning
3.10 0,25 N natriumhydroxydopløsning
3.11 Mættet natriumsulfidopløsning p.a.3.12 Natriumtiosulfatopløsning 8 % (w/v); Na
2S2O3·5H2O p.a.
3.13 Granuleret pimpsten, vasket med saltsyre og glødet.
4.Apparatur
Destruktionsapparat og destillationsapparat ifølge Kjeldahl (se bemærkning
7.1).
5.Udførelse
5.1Destruktion
1 g af prøven afvejes med 1 mg nøjagtighed og kommes i destruktions-
kolben. Hertil sættes 10 g kaliumsulfat (3.1), en passende mængde af
katalysatoren (3.2) (0,3 til 0,4 g kobberoxyd eller 0,9 til 1,2 g kobber-
sulfat eller en dråbe kivksølv eller 0,6 til 0,7 g kviksølvoxyd), 25 ml
svovlsyre (3.4) og et par stykker granuleret pimpsten (3.13) og kolbeind-
holdet blandes. Kolben opvarmes i begyndelsen moderat, derefter —
under jævnlig omrystning — til substansen forkuller og skumdannelsen
ophører og mod slutningen intensivt til væsken koger jævnt. Overophed-
ning af kolben og vedhæng af organiske dele på kolbevæggen skal
undgås. Såsnart opløsningen er klar og farveløs (resp. lysegrøn, såfremt
der er anvendt en kobberholdig katalysator) fortsættes kogningen i endnu
1 time, hvorefter der afkøles.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 6
▼B
5.2Destillation
Under kontinuerlig svingning tilsættes der forsigtigt 250 til 350 ml vand,
hvorved sulfaterne skal opløses fuldstændigt. Der afkøles; derpå tilsættes
nogle stykker granuleret zink (3.3).
I destillationsapparatets forlagskolbe kommes der alt efter det forventede
kvælstofindhold nøjagtig 25 ml 0,1 N (3.5) eller 0,5 N (3.6) svovlsyre
(se bemærkning 7.2), hvortil der sættes nogle dråber metylrødt-I (3.7).
Kolben forbindes med destillationsapparatets køler og dennes yderste
ende sænkes mindst 1 cm ned i væsken i forlagskolben (se bemærkning
73). Gennem en tragt med hane fyldes 100 ml natriumhydroxydopløsning
40 % (3.8) langsomt ned i destillationskolben. Ved anvendelse af en
kviksølvkatalysator tilsættes der i destillationskolben yderligere 10 ml
natriumsulfidopløsning (3.11) eller 25 ml natriumtiosulfatopløsning
(3.12).
Kolben opvarmes således, at der i løbet af 30 minutter afdestilleres ca.
150 ml af væsken. Efter disse 30 minutters forløb kontrolleres den
neutrale reaktion i destillatet med lakmuspapir. Er reaktionen alkalisk,
fortsættes destilleringen. Den bringes til ophør, når destillatet på lakmu-
spapiret viser sig at være neutralt. Under destilleringsprocessen svinges
forlagskolbens indhold med jævne mellemrum, og dets farvning iagt-
tages. Såfremt farvningen går over i det gullige, tilsættes omgående en
nøje afmålt mængde 0,1 N (3.5) eller 0,5 N (3.6) svovlsyre.
5.3Titrering
I forlagskolben titreres overskuddet af svovlsyre med 0,1 N (3.9) eller
0,25 N (3.10) natriumhydroxydopløsning, alt efter den anvendte svovl-
syres normalitet, til omslag til klar gul farve.
5.4Kontrol af metoden
For at kontrollere, om reagenserne er kvælstoffri, udføres et blindforsøg
(destillation og titrering) uden analyseprøven. Til kontrol af metodens
nøjagtighed skal analysen (destruktion, destillation og titrering) udføres
med 1,5 til 2,0 g acetanilid p.a. (smp. 114º C; % N: 10,36) ved tilstede-
værelse af 1 g kvælstoffri saccharose, 1 g acetanilid forbruger 14,80 ml
0,5 N svovlsyre.
6.Beregning af resultaterne
Mængden af den forbrugte svovlsyre beregnes, 1 ml 0,1 N svovlsyre svarer
til 1,4 mg kvælstof. Kvælstøfmængden multipliceres med faktoren 6,25.
Resultatet udtrykkes i procent af prøven.
Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved en og samme prøve ved
indhold på mindre end 20 % råprotein ikke være over 0,2 % absolut, ved
indhold på fra 20 % til 40 % råprotein ikke over 1,0 % relativt, ved indhold
på over 40 % råprotein ikke over 0,4 % absolut.
7.Bemærkninger
7.1 Apparatur, ved hvilket omhældning mellem destruktion og destillation er
nødvendig, kan anvendes. Der må ikke spildes under omhældningen.
7.2 Ved kvælstoffattige foderstoffer kan mængden af 0,1 N svvovlsyre, som
skal fyldes i opsamlingskolben, eventuelt reduceres til 10 eller 15 ml,
hvorefter der fyldes op med vand til 25 ml.
7.3 Findes der ikke nogen tragt med hane på destillationsapparatet, sker
tilsætningen af natriumhydroxydopløsningen umiddelbart før kolben
forbindes med køleren; væsken skal i så fald løbe langsomt ned langs
kolbevæggen for at undgå, at den opblandes med den sure opløsning.
3.BESTEMMELSE AF DET MED PEPSIN OG SALTSYRE OPLØSE-
LIGE RÅPROTEIN
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af det med pepsin og saltsyre opløselige råpro-
tein under definerede betingelser. Metoden gælder for alle foderstoffer.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 7
▼B
2.Princip
Prøven behandles 48 timer ved 40º C med en pepsin-saltsyre-opløsning.
Suspensionen filtreres, og kvælstofindholdet i filtratet bestemmes efter den
til bestemmelse af råprotein beskrevne metode.
3.Reagenser
3.1 Saltsyre, mf. 1,125.3.2 0,075 N saltsyre.3.3 Pepsin 2.0 E/mg. Aktiviteten er defineret i 4. del af forskrifterne i dette
bilag og kontrolleres i overensstemmelse dermed.
3.4 Pepsinopløsning ca. 0,02 % (w/v) i saltsyre (3.2), frisk tilberedt. Akti-
vitet 400 E/l.
3.5 Antiskumemulsion (f. eks. silikone).3.6 Samtlige under punkt 3 i metoden til bestemmelse af råproteiner anførte
reagenser.
4.Apparatur
4.1 I termostatstyret vandbad eller varmeskab, indstillet på 40º C ± 1º C.4.2 Apparatur til destruktion og destillation ifølge Kjeldahl.
5.Udførelse
5.1Oplosning af råproteinet (se bemærkning 7.2)
2 g af prøven afvejes med 1 mg nøjagtighed og kommes i en 500 ml
målekolbe. Hertil sættes 450 ml pepsinopløsning (3.4), som først er
opvarmet til 40º C, hvorefter der rystes for at forhindre klumpdannelse.
Suspensionens pH-værdi skal ligge under 1,7. Kolben henstilles i
vandbad eller varmeskab (4.1) i 48 timer. Der rystes efter 8, 24 og 32
timer. Efter 48 timer tilsættes 15 ml saltsyre (3.1), afkøles til 20º C,
fyldes op med vand til mærket og filtreres.
5.2Destruktion
250 ml af filtratet kommes i destruktionsapparaturets kolbe (4.2). Derpå
tilsættes de til destruktionen nødvendige reagenser, som anført i beskri-
velsen af metoden til bestemmelse af råprotein under punkt 5.1, 2.
punktum. Der blandes og opvarmes til kogetemperatur. Såfremt der
dannes kraftigt skum, tilsættes nogle dråber antiskumemulsion (3.5).
Væsken holdes i kraftigt kog, til vandet er næsten fuldstændig fordampet.
De sidste spor af vand elimineres forsigtigt ved lavere varmetilførsel.
Når opløsningen er klar og farveløs (resp. lysegrøn ved anvendelse af
en kobberholdig katalysator), fortsættes kogningen i endnu 1 time;
derpå afkøles der.
5.3Destillation og titrering
Fremgangsmåde som beskrevet i metoden til bestemmelse af råproteiner
under 5.2 og 5.3.
5.4Blindforsøg
Et blindforsøg udføres under anvendelse af samme fremgangsmåde uden
analyseprøve.
6.Beregning af resultaterne
Rumfanget af den i blindforsøget forbrugte svovlsyre trækkes fra analyseprø-
vens forbrug. 1 ml 0.1 N svovlsyre svarer til 1,4 mg kvælstof.
Den fundne kvælstofmængde multipliceres med faktoren 625. Resultatet
udtrykkes i procent af prøven.
Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved én og samme prøve
— ved indhold på mindre end 20 % opløseligt råprotein, ikke være over
0,4 % absolut,
— ved indhold på 20 til 40 % opløseligt råprotein, ikke over 2 % relativt,1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 8
▼B
— ved indhold på mere end 40 % opløseligt råprotein, ikke over 0,8 %
absolut.
7.Bemærkninger
7.1 De beregnede værdier står ikke i direkte forhold til fordøjeligheden in
vivo.
7.2 Foderstoffer, hvis råfedtindhold er mere end 10 %, skal affedtes ved
ekstraktion med petroleumsæter (kp. 40—60º C).
4.BESTEMMELSE AF PEPSINAKTIVITET
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tjener til kontrol af aktiviteten i den pepsin, der anvendes til
bestemmelse af det med pepsin og saltsyre opløselige råprotein.
2.Princip
Hæmoglobin behandles under definerede betingelser med pepsin og fortyndet
saltsyre. Den ikke hydrolyserede andel af proteinerne udfældes med triklored-
dikesyre. Til filtratet sættes natriumhydroxydopløsning og reagens ifølge
Folin-Ciocalteu. Ekstinktionen af denne opløsning måles ved 750 µ og den
til denne ekstinktion svarende mængde tyrosin aflæses af en standardkurve.
Definition: Pepsin-enheden (E) defineres som den enzymmængde, der under
metodens betingelser pr. minut frigiver så mange hydroxyaryl-grupper, at
disses farvning med Folin-Ciocalteureagens giver en ekstinktion, som svarer
til ekstinktionen af 1 µ mol tyrosin under de samme betingelser.
3.Reagenser
3.1 0,2 N saltsyre3.2 0,06 N saltsyre3.3 0,025 N saltsyre3.4 trikloreddikesyreopløsning 5 % (w/v)3.5 0,5 N natriumhydroxydopløsning
3.6 Reagens ifølge Folin-Ciocalteu: 100 g natriumwolframat (Na
2WO4·
2H2O), 25 g natriummolybdat (Na2MoO4·2H2O) og 700 ml vand
kommes i en 2 liters rundbundet kolbe med tilsleben prop. — Der
tilsættes 50 ml fosforsyre (mf. 1,71) og 100 ml koncentreret saltsyre
(mf. 1,19), hvorpå kolben forbindes med en tilbageløbskøler. Der
opvarmes til kogetemperatur og opløsningen holdes svagt i kog 10 timer.
Efter afkøling fjerner man tilbageløbskøleren, tilsætter 175 g litiumsulfat
(Li2SO4·2H2O), 50 ml. vand og 1ml brom. Umiddelbart herefter koger
man 15 minutter for at fjerne den overskydende brom.
Efter afkøling fyldes opløsningen over i en 1 liter målekolbe, der fyldes
op med vand, rystes og filtreres. Det færdige reagens må ikke antage
grønlig farve. Før brugen fortyndes 1 volumendel reagens med 2 volu-
mendele vand.
3.7 Hæmoglobinopløsning: En til 354 mg kvælstof(1) svarende hæmoglobin-
mængde (ca. 2 g), proteasesubstrat ifølge Anson, afvejes og kommes i en
200 ml kolbe med tilsleben prop. Man tilsætter nogle ml 0,06 N saltsyre
(3.2), forbinder kolben med vakuumpumpen og ryster, indtil hæmoglo-
binet er fuldstændig opløst. Derefter fjerner man vakuum og tilsætter
under omrystning den endnu indtil 100 ml manglende mængde saltsyre
(3.2). Friskfremstilles før brugen.
3.8 Tyrosin-standardopløsning: 181,2 mg tyrosin opløses i saltsyre (3.1) og
der fyldes op med samme syre til 1 liter (stamopløsning). Der udtages
20,0 ml af denne opløsning, som fortyndes med saltsyre (3.1) til 100 ml.
1 ml af denne opløsning indeholder 0,2 µ mol tyrosin
4.Apparatur
4.1 Ultratermostat, indstillet på 25º C ± 0,1º C.4.2 Spektrofotometer.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 9
(1) Kvælstofindholdet bestemmes efter Kjeldahls semimikrometode (teoretisk indhold:
17,7 % nitrogren),
▼B
4.3 Kronometer, nøjagtighed: 1 sek.
4.4 pH-meter.
5.Udførelse
5.1Fremstilling af opløsningen (se bemærkning 7.1)
150 mg pepsin opløses i 100 ml saltsyre (3.2). Af denne opløsning afpi-
petteres 2 ml i en 50 ml målekolbe, og der fyldes op med saltsyre (3.3)
til mærket. Den med pH-meteret kontrollerede pH-værdi bør ligge på
1,6 ± 0,1. Kolben sættes ind i ultratermostaten (4.1).
5.2Hydrolyse
5,0 ml hæmoglobinopløsning (3.7) pipetteres over i et reagensglas og der
opvarmes i ultratermostaten (4.1) til 25º C. Derpå tilsætter man 1,0 ml af
den ifølge 5,1 fremstillede pepsinopløsning, blander ved hjælp af en i
spidsen fortykket glasstang, som bevæges ca. 10 gange op og ned, og
lader reagensglasset henstå i nøjagtig 10 minutter (regnet fra pepsinoplø-
sningens tilsætning) i vandbad ved 25º C (tid og temperatur skal
overholdes nøje). Efter forløbet af de 10 minutter tilsættes 10,0 ml af
den i forvejen til 25º C opvarmede trikloreddikeopløsning (3.4), der
rystes og filtreres gennem et tørt filter.
5.3Udvikling af farvningen og måling af ekstinktionen
5,0 ml af filtratet afpipetteres i en 50 ml Erlenmeyerkolbe, hvortil der
sættes 10,0 ml natriumhydroxydopløsning (3.5). Derpå tilsættes der
under konstant omrystning 3,0 ml af det fortyndede reagens ifølge
Folin-Ciocalteu (3.6). Efter 5 til 10 minutter bestemmes ekstinktionen
af opløsningen fotometrisk i 1 cm kuvetter ved 750 µ over for vand.
5.4Til hver bestemmelse udføres et blindforsøg som følger:
5,0 ml hæmoglobinopløsning (3.7) afpipetteres i et reagensglas og
opvarmes i ultratermostaten (4.1) til 25º C. Derpå tilsætter man 10,0 ml
af den i forvejen til 25º C opvarmede trikloreddikesyreopløsning (3.4),
blander og tilsætter umiddelbart derefter 1,0 ml af den ifølge 5.1 frem-
stillede pepsinopløsning. Man blander ved hjælp af en glasstang og
lader reagensglasset henstå i nøjagtig 10 minutter ved 25º C i et vandbad
(4.1). Der omrystes og filtreres. Herefter fortsætter man som beskrevet
under 5.3.
5.5Standardkurve
I 50 ml Erlenmeyerkolben kommes 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 og 5,0 ml tyrosin-
standardopløsning (3.8) (svarende til tyrosinmængderne på 0,2, 0,4, 0,6,
0,8 og 1,0 µ mol). Rækken kompletteres med en tyrosinfri sammenlig-
ningsprøve. De enkelte afmålinger suppleres med saltsyre (3.1) til
5,0 ml. Endvidere tilsættes der 10,0 ml. natriumhydroxydopløsning (3.5)
og under konstant omrystning 3,0 ml af det fortyndede reagens ifølge
Folin-Ciocalteu (3.6). Ekstinktionen måles som under 5.3, sidste
punktum. Standardkurven tegnes ved at sætte de tilsatte mængder tyrosin
mod ekstinktionen.
6.Beregning af resultaterne
Af standardkurven aflæses den mængde tyrosin i µ mol, som svarer til den
med blindværdien korrigerede ekstinktion af de farvede opløsninger.
Pepsinens aktivitet i µ mol tyrosin pr. mg og pr. minut ved 25º C beregnes
efter følgende formel:
Enheder pr :mg E =mgðÞ ¼0;32 a
p
idet
a = den af standardkurven aflæste tyrosinmængde i µ mol,
p = vægten i mg af den ifølge 5.2 tilsatte pepsinmængde.
7.Bemærkninger
7.1 Den mængde pepsin, som skal opløses, vælges således, at der ved den
fotometriske slutmåling opnås en ekstinktion på 0,35 ± 0,035.
7.2 2 E/mg, bestemt efter denne metode, svarer til1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 10
▼B
3.64 m-Anson E/mg (µ mol tyrosin/mg · min. ved 35,5º C) eller
36400 gængse E/g (µ mol tyrosin/g · 10 min. ved 35,5º C).
5.BESTEMMELSE AF FRI OG TOTALGOSSYPOL
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af fri gossypol, totalgossypol og kemisk nært
beslægtede substanser i frø, mel og kager af bomuldsfrø, samt i foderblan-
dinger, som indeholder produkter af bomuldsfrø. Den laveste grænse for
bestemmeligheden er 20 ppm.
2.Princip
Gossypol ekstraheres under tilstedeværelse af 3-amino-1-propanol enten med
en isopropanol-hexan-blanding til bestemmelse af fri gossypol eller med
dimetylformamid til bestemmelse af totalgossypol og omsættes med anilin
til gossypol-dianiline, hvis ekstinktion måles ved 440 mµ.
3.Reagenser
3.1 Isopropanol-hexan-blanding: 60 volumendele isopropanol p.a. blandes
med 40 volumendele n-hexan.
3.2 Opløsningsmiddel A: I en 1 liter målekolbe fyldes der ca. 500 ml isopro-
panol-hexan-blanding (3.1), 2 ml 3-amino-1-propanol, 8 ml iseddike og
50 ml vand, og der fyldes op med isopropanol-hexan-blanding (3.1) til
mærket. Dette reagens er holdbart 1 uge.
3.3 Opløsningsmiddel B: I en 100 ml målekolbe afpipetteres 2ml 3-amino-1-
propanol og 10 ml iseddike, hvorefter der afkøles til rumtemperatur og
fyldes op med N,N-dimetylformamid til mærket. Dette reagens er hold-
bart 1 uge.
3.4 Anilin p. a.: Såfremt ekstinktionen i blindforsøget er større end 0,022,
destilleres anilinen over zinkstøv, idet man bortkaster de første og sidste
10 % af destillatet. I køleskab er dette reagens ved opbevaring i vel
tillukket, brunt glas holdbart i et par måneder.
3.5 Gossypol-standardopløsning A: I en 250 ml målekolbe opløses 27,9 mg
gossypol-acetat med opløsningsmiddel A (3.2) og der fyldes op til
mærket med dette, 50 ml af denne opløsning afpipetteres i en 250 ml
målekolbe og der fyldes op med opløsningsmiddel A (3.2) til mærket.
Denne opløsnings gossypolkoncentration er 0,02 mg/ml. Før brugen
henstår denne opløsning 1 time ved rumtemperatur.
3.6 Gossypol-standardopløsning B: I en 50 ml målekolbe opløses 27,9 mg
gossypol-acetat i opløsningsmiddel B (3.3) og der fyldes op til mærket.
Gossypolkoncentrationen i denne opløsning er 0,5 mg/ml.
Standard-gossypol-opløsningerne er holdbare i 24 timer, såfremt de er
beskyttet mod lyset.
4.Apparatur
4.1 Mekanisk rysteapparat: ca. 35 omdr./min.4.2 Spektrofotometer.
5.Udførelse
5.1Afvejning
Størrelsen af den afvejede stofmængde retter sig efter det formodede
indhold af gossypol i prøven. Det er fordelagtigt at arbejde med en lille
afvejning og med en relativt stor aliquot del af filtratet for at få en
tilstrækkelig mængde gossypol til en nøjagtig fotometrisk måling. Til
bestemmelsen af fri gossypol i frø, mel og kager af bomuldsfrø bør
afvejningen ikke være på mere end 1 g, medens den ved foderblandinger
kan være på 5 g. En aliquot del af filtratet på 10 ml er i de fleste tilfælde
anvendelig; den skal indeholde 50 til 100 µg gossypol. Til bestemmelsen
af totalgossypol bør afvejningen ligge på fra 0,5 til 5 g, således at der i
den aliquot del af filtratet på 2 ml er et indhold på 40 til 200 µg
gossypol.
Analyser udføres ved en rumtemperatur på ca. 20º C.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 11
▼B
5.2Bestemmelse af fri gossypol
Den afvejede stofmængde bringes i en 250 ml kolbe med tilsleben prop,
hvis bund er dækket med glassplinter, 50 ml af opløsningsmidlet A (3.2)
tilsættes med pipette, kolben lukkes og rystes én time i rysteapparat.
Derpå filtreres gennem et tørt filter og giltratet opsamles i en lille kolbe
med tilsleben prop. Under filtreringen tildækkes tragten med et urglas.
Lige store aliquote dele af filtratet, indeholdende 50 til 100 µg gossypol
afpipetteres i to 25 ml målekolber (A og B), eventuelt fortyndes med
opløsningsmiddel A (3.2) til 10 ml. Derpå suppleres kolbens indhold
(A) med isopropanol-hexan-blandingen (3.1) til mærket. Denne opløs-
ning anvendes som sammenligningsopløsning ved målingen af
prøveopløsningen. Derefter afpipetteres 10 ml opløsningsmiddel A (3.2)
i to andre 25 ml målekolber. Indholdet i kolben (C) suppleres med
isopropanol-hexan-blandingen (3.1) til mærket. Denne oplosning
anvendes som sammenligningsopløsning ved målingen af blindprøveo-
pløsningen.
Til hver af målekolberne (D) og (B) sættes 2 ml anilin (3.4). Der
opvarmes i 30 minutter i et bad med kogende vand til udvikling af farv-
ningen, afkøles til stuetemperatur, fortyndes med isopropanol-hexan-
blandingen (3.1) til mærket, omrystes, hvorefter det hele henstår 1 time.
Herefter måles i spektrofotometeret ved 440 mµ og i glaskuvetter på 1 cm
tykkelse blindprøvens (B) ekstinktion i forhold til sammenligningsopløs-
ningen (C) og prøveopløsningens (B) ekstinktion i forhold til
sammenligningsopløsningen (A). Ekstinktionen af blindprøveopløsningen
trækkes fra ekstinktionen af prøveopløsningen (= korrigeret ekstinktion).
På basis af den fundne værdi beregnes indholdet af fri gossypol som
beskrevet under 6.
5.3Bestemmelse af totalgossypol
En afvejet stofmængde indeholdende 1 til 5 mg gossypol kommes i en
50 ml målekolbe; derpå tilsættes 10 ml af opløsningsmidlet B (3.3).
Samtidig tilberedes et blindforsøg med 10 ml af opløsningsmidlet B
(3.3) i en anden 50 ml målekolbe. Begge målekolber opvarmes i 30
minutter i et bad med kogende vand, afkøles til stuetemperatur og
fortyndes med isopropanol-hexan-blandingen (3.1) til mærket. Der omry-
stes, henstilles 10 til 15 minutter, derpå filtreres, og filtratet opsamles i
kolber med tilsleben prop.
2 ml af prøvefiltratet afpipetteres i hver af to 25 ml målekolber og 2 ml
af filtratet fra blindforsøget i hver af to andre 25 ml målekolber. En
kolbe i hver serie fyldes op med isopropanol-hexan-blandingen (3.1) til
25 ml. Disse opløsninger anvendes som sammenligningsopløsninger.
Til hver af de to andre målekolber sættes 2 ml anilin (3.4). Derpå
opvarmes i 30 minutter i et bad med kogende vand til udvikling af farv-
ningen, afkøles til stuetemperatur, fortyndes med isopropanol-hexan-
blandingen (3.1) til 25 ml, omrystes, hvorefter det hele henstår 1 time.
Ekstinktionen måles som beskrevet under 5.2 for fri gossypol. På basis af
den fundne værdi beregnes indholdet af totalgossypol som beskrevet
under 6.
6.Beregning af resultaterne
Beregningen af resultaterne kan foretages på basis af den specifikke ekstink-
tion (6.1) eller ved benyttelse af en standardkurve (6.2).
6.1På basis af den specifikke ekstinktion
Den specifikke ekstinktion andrager under de angivne betingelser for fri
gossypol E1%
1c m¼625
totalgossypol E1%
1c m¼600
Indholdet af fri eller totalgossypol i prøven andrager:
E/C11250
E1%
1c m/C1p/C1a¼% gossypol
idet:
E = korrigeret ekstinktion, som bestemt under 5.2,1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 12
▼B
p = afvejet stofmængde i g
a = aliquot del af filtratet i ml.
6.2Ved hjælp af en standardkurve
6.2.1 Fri gossypol
Der forberedes 2 rækker med hver fem 25 ml målekolber. I begge
rækker afpipetteres 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 og 10,0 af gossypol-standard-
opløsningen A (3.5) og rumfanget suppleres til 10 ml med
opløsningsmidlet A (3.2). I hver række stilles en 25 ml målekolbe,
som kun indeholder 10 ml af opløsningsmidlet A (3.2) (blind-
forsøg).
Kolberne i den første række inclusive blindforsøget fyldes op med
isopropanol-hexan-blandingen (3.1) til 25 ml (sammenlignings-
række).
Til hver af kolberne i den anden række, inclusive blindforsøget,
sættes 2 ml anilin (3.4). Derpå opvarmes i 30 minutter i et bad
med kogende vand til udvikling af farvningen, afkøles til rumtem-
peratur, fortyndes med isopropanol-hexan-blandingen (3.1) til
mærket, rystes, hvorefter det hele henstår 1 time (standardrække).
Under de i 5.2 beskrevne betingelser måles ekstinktionen af stan-
dardrækkeopløsningerne ved sammenligning med de tilsvarende
opløsninger i sammenligningsrækken. Standardkurven fremstilles
grafisk, idet ekstinktionsværdierne og gossypolmængderne (i µg)
indtegnes over for hinanden.
6.2.2 Total gossypol
Der tilberedes seks 50 ml målekolber. I den første afpipetteres
10 ml af opløsningsmidlet B (3.3) og i hver af de øvrige 2,0, 4,0,
6,0, 8,0 og 10,0 ml af gossypolstandardopløsningen B (3.6).
Indholdet i hver af kolberne suppleres med opløsningsmidlet B
(3.3) til 10 ml, opvarmes i 30 minutter i et bad med kogende
vand, afkøles til rumtemperatur, fortyndes med isopropanol-
hexan-blandingen (3.1) til mærket og rystes.
I to rækker med seks 25 ml målekolber afpipetteres i hver 2,0 ml
af denne opløsning. Kolberne i den første række fyldes op med
isopropanol-hexan-blandingen (3.1) til 25 ml (sammenlignings-
række).
I kolberne i den anden række kommes i hver 2 ml anilin (3.4).
Derpå opvarmes i 30 minutter i et bad med kogende vand, afkøles
til rumtemperatur, fortyndes med isopropanol-hexan-blandingen
(3.1) til mærket, rystes, hvorefter det hele henstår 1 time (standard-
række).
Under de i 5.2 beskrevne betingelser måles ekstinktionen af stan-
dardrækkeopløsningerne ved sammenligning med de tilsvarende
opløsninger i sammenligningsrækken. Standardkurven fremstilles
grafisk, idet ekstinktionsværdierne og gossypolmængderne (i µg)
indtegnes over for hinanden.
6.3Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved én og samme prøve
ved indhold på
— mindre end 500 ppm gossypol ikke være over 15 % relativt,
— 500 til 750 ppm gossypol ikke over 75 ppm absolut,— 750 ppm og mere gossypol ikke over 10 % relativt.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 13
▼B
BILAG II
1.PÅVISNING OG IDENTIFIKATION AF ANTIBIOTIKA INDEN FOR
TETRACYKLINGRUPPEN
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tjener til påvisning og identifikation af antibiotika inden for tetracy-
klingruppen i foderstoffer, som indeholder mindst 0,1 ppm antibiotikum, ikoncentrater og i forblandinger.
2.Princip
Prøven ekstraheres med en blanding af metanol og saltsyre. Ekstrakten papir-
kromatograferes til sammenligning med standardopløsninger efter opstigende
metodik. Antibiotikaerne påvises og identificeres ved sammenligning af deres
Rf-værdier med standardstoffernes enten ved fluorescens i UV-lys (højt
indhold af antibiotika) eller ved bioautografi på et med B. cereus podet
agarnæringssubstrat.
3.Reagenser og næringssubstrat
3.1Stødpudeopløsning, pH 3,5
Citronsyre-monohydrat p.a. 10,256 g
Dinatriumfosfat Na
2HPO4·2H2O p.a. 7,45 g
Acetone p.a. 300 ml
Destilleret vand ad 1000 ml
3.2Fosfatstødpudeopløsning, pH 5,5
Monokaliumfosfat KH2PO4p.a. 130,86 g
Dinatriumfosfat Na2HPO4·2 H2O p.a. 6,947 g
Destilleret vand ad 1000 ml
3.3 Udviklingsvæske I: Blanding af nitrometan, ren/kloroform, ren/a-
diklorhydrin: 20/10/1,5 i vol. Tilberedes umiddel-
bart før brugen.
3.4 Udviklingsvæske II: Blanding af nitrometan, ren/kloroform, ren/a-
pikolin: 20/10/3 i vol. Tilberedes umiddelbart før
brugen.
3.5 Blanding af metanol, ren/saltsyre (mf. 1,19): 98/2 i vol.3.6 0,1 N saltsyre
3.7 Ammoniakopløsning, mf. 0,91
3.8 Standardpræparater: Klortetracyklin, oxytetracyklin, tetracyklin, hvis
aktivitet angives som hydroklorid.
3.9Testorganisme: B. cereus ATCC 11.778
Opbevaring af stamkulturen, fremstilling af sporesuspensionen og
udpodning på næringssubstratet: Fremgangsmåde som i den under
punkterne 3.1 og 3.2 i 2. del af dette bilag beskrevne bestemmelsesme-
tode for klortetracyklin, oxytetracyklin og tetracyklin ved diffusion i
agarnæringssubstrat.
3.10Næringssubstrat (
1)
Glukose 1 g
Pepton, tryptisk fordøjet 10 g
Kødekstrakt 1,5 g
Gærekstrakt 3 g1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 14
(1) Ethvert næringssubstrat, som er normal handelsvare og har tilsvarende sammensætning,
og som giver samme resultater, kan anvendes.
▼B
Agar 20 g
Destilleret vand ad 1000 ml
Før brugen indstilles til pH 5,8.
3.11 Opløsning af 0,1 % (w/v) 2,3,5-trifenyltetrazoliumklorid og 5 % (w/v)
glukose.
4.Apparatur
4.1 Papirkromatografisk apparatur indrettet til opstigende metodik (25 cm
papirhøjde). Schleicher- og Schüll-papir 2040 b eller 2043 b, eller tilsva-
rende.
4.2 Centrifuge.
4.3 Inkubator, indstillet på 30º C.4.4 UV-lampe til fluorescenspåvisning.
4.5 Glasplader ca. 20×30 cm, til fremstilling af en flad skål til bioautogra-
fien.
5.Standardopløsninger
5.1Stamopløsninger
Med saltsyre (3.6) fremstilles opløsninger af standardpræparaterne (3.8),
hvis koncentration svarer til 500 µg klortetracyklin-HCl, oxytetracyklin-
HCl og tetracyklin-HCl pr. ml.
5.2Sammenligningsopløsninger til påvisning i UV-lys
Opløsningerne (5.1) fortyndes med fosfatstødpudeopløsningen (3.2), for
at opnå opløsninger, hvis koncentration svarer til 100 µg klortetracy-
klin-HCl, oxytetracyklin-HCl og tetracyklin-HCl pr. ml.
5.3Sammenligningsopløsninger til påvisning ved bioautografi
Opløsningerne (5.1) fortyndes med fosfatstødpudeopløsningen (3.2) for
at opnå opløsninger, hvis koncentration svarer til 5 µg klortetracyklin:
HCl, oxytetracyklin-HCl og tetracyklin-HCl pr. ml.
6.Ekstraktion
Ved et forventet indhold af antibiotikum på under 10 ppm kan man enten
anvende den homogeniserede prøve eller den udsigtede finfraktion, da antibi-
otikaerne fortrinsvis befinder sig i de fineste fraktioner.
Prøven opslæmmes med blandingen (3.5) og centrifugeres. Det ovenstående
væskelag påsættes direkte eller, om nødvendigt, fortyndes der med blan-
dingen (3.5), for at opnå koncentrationer af antibiotikum på ca. 100 µg pr.
ml (6.1) og ca. 5 µg pr. ml (6.2).
7.Påvisning og identifikation
7.1Kromatografering
Papiret dyppes i stødpudeopløsningen pH 3,5 (3.1) og udpresses mellem
tørt filtrerpapir for at fjerne den overskydende væske. Derpå afsættes der
pletter à 0,01 ml af sammenligningsopløsningerne (5.2 og 5.3) og
ekstraktopløsningerne (6.1 og 6.2) på papiret. Afgørende for en god
adskillelse er den rigtige fugtighed i papiret; det er eventuelt nødvendigt
at tørre papiret lidt mere.
Der udvikles ved opstigende kromatografering med udviklingsvæske I
(3.3) til påvisning ved bioautografi, med udviklingsvæske II (3.4) til
påvisning i UV-lys. Når væskefronten har bevæget sig ca. 15 til 20 cm
opad (ca. 1½ time), afbrydes kromatograferingen og papiret tørres.
7.2Påvisning i UV-lys
Ved et antibiotikumindhold på over 1 µg/cm
2kan pletterne efter behand-
ling med ammoniakdampe (3.7) som følge af deres guldgule fluorescens
gøres synlige i UV-lys (4.4).1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 15
▼B
7.3Påvisning ved bioautografi
Det med B. cereus (3.9) podede næringssubstrat (3.10) hældes på glas-
plader (4.5) og papiret lægges på substratet. Efter 5 minutters kontakt
trækkes det af og lægges et andet sted på substratet, hvor det bliver
under inkubationstiden. Inkubationen sker natten over ved 30º C i inku-
batoren. Ved tilstedeværelsen af et antibiotikum inden for
tetracyklingruppen forekommer der i det ellers uklare næringssubstrat
klare hæmningszoner.
Kromatogrammet fikseres efter inkubationen ved besprøjtning af papiret
med opløsningen (3.11).
7.4Identifikation
Nedenfor angives de relative Rf-værdier for de til tetracyklingruppen
hørende antibiotika. Disse værdier kan variere en ubetydelighed alt efter
papirets kvalitet og fugtighedsindhold.
Klortetracyklin (CTC) 0,60
Tetracyklin (TC) 0,40
Oxytetracyklin (OTC) 0,20
4-Epi-CTC 0,154-Epi-TC 0,13
4-Epi-OTC 0,10
Epi-forbindelser har en mindre antibiotisk aktivitet end de normale
forbindelser.
2.BESTEMMELSE AF KLORTETRACYKLIN, OXYTETRACYKLIN
OG TETRACYKLIN
A. VED DIFFUSION I AGARNÆRINGSSUBSTRAT
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af klortetracyklin (CTC), oxytetracyklin (OTC)
og tetracyklin (TC) i foderstoffer, koncentrater og forblandinger. Den laveste
grænse for bestemmeligheden andrager 5 ppm. Indhold under 5 ppm kan
bedømmes ved grafisk interpolation.
2.Princip
Ved indhold lige med eller under 50 ppm ekstraheres prøven med formamid.
Ved indhold over 50 ppm ekstraheres prøven til bestemmelse af CTC med en
blanding af acetone, vand og saltsyre, og til bestemmelse af CTC og TC med
en blanding af metanol og saltsyre.
Derpå fortyndes ekstrakterne, og deres antibiotiske aktivitet bestemmes ved
måling af diffusionen af CTC, OTC eller TC i et med B. cereus-podet
agarnæringssubstrat. Diffusionen påvises ved hjælp af de opstående
hæmningszoner mod testorganismen. Diameteren af disse hæmningszoner er
direkte proportional med logaritmen til koncentrationen af det pågældende
antibiotikum.
3.Testorganisme: B. cereus ATCC 11.778
3.1Opbevaring af stamkulturen
Et agarskråglas af næringssubstratet (4.1), uden borsyre og metylenblåt,
podes med B. cereus og inkuberes ved ca. 30º C natten over. Derefter
opbevares kulturen i køleskab og podes hver 14. dag over i agarskråglas.
3.2Fremstilling af sporesuspensionen
Et agarskråglas (3.1) opslæmmes med 2 til 3 ml fysiologisk kogsalto-
pløsning (4.5). Med denne suspension podes en Rouxkolbe, som
indeholder 300 ml af næringssubstratet (4.1), uden borsyre og metyl-
enblåt, med en agarkoncentration på 3 til 4 %. Efter en inkubationstid
på 3 til 5 dage ved 28 til 30º C opslæmmes kimene efter endt sporole-
ring, som kontrolleres mikroskopisk, med 15 ml ethanol (4.6) og
homogeniseres. Denne suspension kan opbevares i mindst 5 måneder i
køleskab.
Ved hjælp af forsøgsplader med testsubstratet (4.1) findes den podnings-
mængde, som giver de størst mulige, men endnu skarpe hæmningszoner
med de forskellige anvendte koncentrationer af antibiotika. Den ligger
normalt på 0,2 til 0,3 ml/1000 ml. Podningen af substratet skal ske ved
50 til 60º C.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 16
▼B
4.Næringssubstrat og reagenser
4.1Testsubstrat (1)
Glukose 1 g
Pepton, tryptisk fordøjet 10 g
Kødekstrakt 1,5 gGærekstrakt 3 g
Agar, alt efter kvalitet 10—20 g
Tween 80 1 mlFosfatstødpudeopløsning, pH 5,5 (4.2) 10 ml
Borsyreopløsning 5 % (w/v) 15 ml
Ethanolisk metylenblåtopløsning 0,5 % 4 mlDestilleret vand ad 1000 ml
Indstilles før brugen på pH 5,8.
4.2Fosfatstødpudeopløsning pH 5,5
Monokaliumfosfat KH
2PO4p.a. 130,86 g
Dinatriumfosfat Na2HPO4·2H2O p.a. 6,947 g
Destilleret vand ad 1000 ml
4.3 Fosfatstødpudeopløsning ph 5,5 fortyndet til 1/10.
4.4Fosfatstødpudeopløsning pH 8
Monokaliumfosfat KH2PO4p.a. 1,407 g
Dinatriumfosfat Na2HPO4·2H2O p.a. 57,539 g
Destilleret vand ad 1000 ml
4.5 Fysiologisk kogsaltopløsning, steril
4.6 Ethanol 20 % (v/v)4.7 0,1 N saltsyre4.8 Formamid 70 % (v/v): Friskfremstillet før brug og indstillet til pH 4,5
med ca. 2 N svovlsyre.
4.9 Blanding acetone, ren/vand/saltsyre (mf. 1,19): 65/33/2 i vol.4.10 Blanding af metanol, ren/saltsyre (mf. 1,19): 98/2 i vol.4.11 Standardpræparater: CTC, OTC, TC, hvis aktivitet angives som hydro-
klorid.
5.Standardopløsninger
5.1Klortetracyklin
Med 0,1 N saltsyre (4.7) fremstilles der af standardpræparatet (4.11) en
stamopløsning, hvis koncentration svarer til 500 µg klortetracyklin-HCl
pr. ml. Denne opløsning er holdbar 1 uge ved opbevaring i køleskab.
Af denne stamopløsning fremstilles en arbejdsstandardopløsning S
8, hvis
koncentration svarer til 0,2 µg klortetracyklin-HCl pr. ml. Fortyndingen
sker med fosfatstødpudeopløsning pH 5,5, som er fortyndet til 1/10
(4.3) og indeholder en tilsætning på 0,01 % amidosort(2).
Derpå fremstilles nedennævnte koncentrationer med fosfatstødpudeopløs-
ningen (4.3) ved efter hinanden påfølgende fortyndinger (1 + 1):
S40,1 µg/ml
S20,05 µg/ml1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 17
(1) Ethvert næringssubstrat, som er normal handelsvare og har tilsvarende sammensætning,
og som giver samme resultater, kan anvendes.
(2) Amidosort tjener til fremhævelse af standardopløsningernes hæmningszoner (blå ringe).
▼B
S10,025 µg/ml
5.2Oxytetracyklin
På samme måde som anført under 5.1 fremstilles der af en stamopløs-
ning, hvis koncentration svarer til 400 µg oxytetracyklin-HCl pr. ml, en
arbejdsstandardopløsning S8med 1,6 µg tetracyklin-HCl pr. ml, og
derefter følgende koncentrationer:
S40,8 µg/ml
S20,4 µg/ml
S10,2 µg/ml
5.3Tetracyklin
På samme måde som anført under 5.1 fremstilles der af en stamopløs-
ning, hvis koncentration svarer til 500 µg tetracyklin-HCl pr. ml, en
arbejdsstandardopløsning S8med 1,0 µg tetracyklin-HCl pr. ml, og
derefter følgende koncentrationer:
S40,5 µg/ml
S20,25 µg/ml
S10,125 µg/ml
6.Ekstraktion
6.1Indhold, lig med eller under 50 ppm
Efter de nedenfor beskrevne angivelser tilsættes der formamid (4.8) til en
afvejet mængde stof, og der rystes i 30 minutter på et rystebord. Derpå
fortyndes straks med fosfatstødpudeopløsningen (4.3) som beskrevet
nedenfor for at opnå U8-koncentrationen. Formamidkoncentrationen i
denne opløsning må ikke andrage mere end 40 %. Herefter centrifugeres
eller dekanteres ekstrakten for at få en klar opløsning. Umiddelbart
derefter fremstilles koncentrationerne U4,U2og U1med fosfatstødpudeo-
pløsningen (4.3) ved efter hinanden påfølgende fortyndinger (1 + 1).
Antibiotika CTC OTC TC
Formodet
indhold i ppm 10 50 10 50 10 50
Afvejning i g 10 10 24 9,6 20 10
ml formamid
(4.8) 100 100 80 100 80 100
ml fosfatstødpu-
deopløsning (4.3)fort.
1: 5
(a)fort.
1: 25
(b)70 200 120fort.
1: 5
(a)
U8koncentration
i µg/ml 0,2 0,2 1,6 1,6 1,0 1,0
(a) 20 ml ekstrakt udtages og fortyndes til 100 ml med fostfatstødpudeopløsning i
en målekolbe.
(b) 4 ml ekstrakt udtages og fortyndes til 100 ml med fostfatstødpudeopløsning i
en målekolbe.
6.2Indhold over 50 ppm
6.2.1 Klortetracyklin
Baseret på det formodede indhold af antibiotika i prøven eller på
fremstillingsgarantien blandes en afvejet stofmængde på mellem 2
og 10 g med den 20-dobbeltevolumen af blandingen (4.9) og der
rystes 30 minutter på et rystebord. Under ekstraktionen skal pH-
værdien ligge under 3; om nødvendigt justeres ned til 3 (ved mine-
ralblandinger indstilles pH-værdien med 10 % eddikesyre).
Derefter bringes en aliquot del af ekstrakten til at ligge på pH 5,5
ved hjælp af fosfatstødpudeopløsningen pH 8 (4.4) under tilsæt-1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 18
▼B
ning af bromkresol-grønt (omslag fra gult til blåt). Derefter
fortyndes der med den til 1/10 fortyndede fosfatstødpudeopløsning
pH 5,5 (4.3) for at få U8-koncentrationen (se 6.1).
Umiddelbart herefter fremstilles koncentrationerne U4,U2og U1med fosfatstødpudeopløsningen (43) ved efter hinanden påfølgende
fortyndinger (1 + 1).
6.2.2 Oxytetracyklin og tetracyklin
Der fortsættes på samme måde som beskrevet under 6.2.1, idet
man erstatter blandingen (4.9) med blandingen (4.10).
7.Testmetode
7.1Podning af næringssubstratet
Sporesuspensionen (3.2) podes ud på testsubstratet (4.1) ved 50 til 60º C.
7.2Fremstilling af pladerne
Testen sættes an som diffusionstest på plader med hver 4 koncentrations-
trin på standardopløsningen (S8,S4,S2,S1) og ekstraktet (U8,U4,U2,U1).
Hver plade skal ubetinget indeholde alle 4 koncentrationer af standard og
prøve.
Derfor skal pladerne have en sådan størrelse, at der kan udstanses mindst
8 huller i substratlaget; huldiameteren skal være 10 til 13 mm. Den
podede substratmængde (7.1) skal være beregnet således, at man får et
ensartet lag på ca. 2 mm tykkelse. Testen bør fortrinsvis udføres på
plader, som er fremstillet af en glasplade, hvorpå der lægges en plan-
drejet aluminiums- eller kunststofring med 20 mm højde og 200 mm
diameter.
I hullerne afpipetteres nøje afmålte mængder af antibiotika-opløsningen
på mellem 0,10 og 0,15 ml, alt efter hullernes diameter.
For hver prøve gentages påfyldningen af hver koncentration mindst 4
gange, således at der pr. påsætning for hver prøve kan bedømmes 32
hæmningszoner.
7.3Inkubation
Der inkuberes i 18 timer ved ca. 28 til 30º C.
8.Bedømmelse
Hæmningszonernes diameter måles fortrinsvis ved projektion. Målingerne
indtegnes på semilogaritmepapir, idet logaritmen til koncentrationerne
indføres over for hæmningszonernes diameter. Både for standarden og for
ekstrakten trækkes lige linjer. Ved en test med ukompliceret forløb skal de
to lige linjer være parallelle.
Logaritmen til den relative aktivitet udregnes efter følgende formel:
U1þU2þU4þU8/C0S1/C0S2/C0S4/C0S8 ðÞ /C1 0;602
U4þU8þS4þS8/C0U1/C0U2/C0S1/C0S2
Faktisk aktivitet = formodet aktivitet × relativ aktivitet.
9.Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved én og samme prøve ikke
være mere end 10 % relativt.
B. VED TURBIDIMETRI
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af klortetracyklin (CTC), oxytetracyklin (OTC)
og tetracyklin (TC) ved indhold på over 1 g/kg, såfremt ingen forstyrrende
ledsagesubstanser fører til uklare ekstrakter. Denne metode er hurtigere end
metoden ved diffusion i agarnæringssubstrat.
2.Princip
Prøven ekstraheres til bestemmelse af CTC med en blanding af acetone, vand
og saltsyre og til bestemmelse af OTC og TC med en blanding af metanol og
saltsyre.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 19
▼B
Ekstrakterne fortyndes og deres antibiotiske virkning bestemmes ved måling
af transmissionen i et med Staphylococcus aureus podet næringssubstrat, til
hvilket der er sat antibiotikum. Transmissionen er en funktion af antibiotiku-
mets koncentration.
3.Testorganisme: Staphylococcus aureus K 141 (1)
3.1Opbevaring af stamkulturen
Et agarskråglas af næringssubstratet (4.1) med tilsætning af 1,5 til 3 %
agar (alt efter kvalitet) podes med S. aureus og inkuberes ved ca. 37º C
natten over. Derefter opbevares kulturen i køleskab og podes hver 4. uge
over i agarskråglas. Samtidig anlægges subkulturer til brug i laboratoriet.
3.2Fremstilling af podningskulturen
24 timer for testen podes et agarskråglas med en subkultur og inkuberes
natten over ved 37º C. Hele kulturen i et skråglas suspenderes i ca. 2 mlaf testsubstratet (4.1) og skylles derefter over i ca. 100 ml af testsub-
stratet (4.1) under sterile betingelser. Denne suspension inkuberes i
vandbad ved 37º C indtil stammevæksten indtræder i sin logaritmiske
fase (1½ til 2 timer).
4.Næringssubstrat og reagenser
4.1Testsubstrat (
2)
Pepton 5 g
Gærekstrakt 1,5 g
Kødekstrakt 1,5 gNatriumklorid 3,5 g
Glukose 1,0 g
Monokaliumfosfat KH
2PO4p.a. 1,32 g
Dikaliumfosfat K2HPO4p.a. 3,68 g
Destilleret vand ad 1000 ml
Efter sterilisation pH 6,8 til 7,0
4.2Fosfatstødpudeopløsning, pH 4,5
Monokaliumfosfat KH2PO4p.a. 13,6 g
Destilleret vand ad 1000 ml
4.3 0,1 N saltsyre
4.4 Blanding af acetone, ren/vand/saltsyre (mf. 1,19): 65/33/2 i vol.
4.5 Blanding af metanol, ren/saltsyre (mf. 1,19): 98/2 i vol.
4.6 Formaldehydopløsning ca. 10 % (w/v)
4.7 Standardpræparater: CTC, OTC, TC, hvis aktivitet angives som hydro-
klorid.
5.Standardopløsning
Med saltsyre (4.3) fremstilles der af standardpræparatet (4.7) en stamopløs-
ning, hvis koncentration svarer til 400 til 500 µg CTC-HCl, OTC-HCl eller
TC-HCl pr. ml. Denne opløsning er holdbar 1 uge i køleskab.
6.Ekstraktion
6.1Klortetracyklin
En prøve på 1 til 2 g bringes sammen med ca. 100 ml af blandingen
(4.4) i en 200 eller 250 ml målekolbe og rystes 30 minutter på et ryste-
bord. Derpå fortyndes der til mærket med fosfatstødpudeopløsning pH
4,5 (4.2), blandes og hensættes til bundfældning.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 20
(1) Denne af LUPA, Kiel, isolerede stamme har en intensivere vækst end S. aureus ATCC
6538 P.
(2) Ethvert næringssubstrat, som er normal handelsvare og har tilsvarende sammensætning,
og som giver samme resultater, kan anvendes.
▼B
6.2Oxytetracyklin og tetracyklin
En prøve på 1 til 2 g bringes sammen med ca. 100 ml af blandingen
(4.5) i en 200 eller 250 ml målekolbe og rystes 30 minutter på et ryste-
bord. Derpå fortyndes der til mærket med fosfatstødpudeopløsning pH
4,5 (4.2), blandes og hensættes til bundfældning.
7.Testmetode
7.1Fremstilling af standard- og ekstraktserier
Standardopløsningen (5) og ekstraktopløsningen (6) fortyndes med
fosfatstødpudeopløsning pH 4,5 (4.2) således, at man får en serie af
fortyndinger. For hver bestemmelse opstilles der på basis af den pågæl-
dende fortynding en standardkurve, som mindst tillader interpolationen af
2 måleværdier for ekstraktopløsningen. Fortyndingerne vælges efter
stammens vækstbetingelser. Disse betingelser kan være forskellige i de
enkelte laboratorier. Normalt anvendes følgende fremgangsmåde:
7.1.1 Klortetracyklin
Standardopløsningen (5) fortyndes med fosfatstødpudeopløsningen
(4.2) for at få en arbejdsstandardopløsning, hvis koncentration
svarer til 0,2 µg CTC-HCl pr. ml. Derpå tilberedes med fosfatstød-
pudeopløsningen (4.2) 6 fortyndinger i testglas med en gentagelse
for hver fortynding som følger:
ml arbejdsstandardop-
løsningml fosfatstødpudeo-
pløsning (4.2)CTC-HCl koncentra-
tion (µg/ml)
0,7 0,3 0,14
0,6 0,4 0,12
0,55 0,45 0,11
0,45 0,55 0,09
0,4 0,6 0,08
0,3 0,7 0,06
Ekstrakten (6.1) fortyndes med fosfatstødpudeopløsningen (4.2) til
en formodet koncentration af CTC-HCl på 0,12 µg/ml. Dermed
påfyldes 2 glas med hver 1ml og 2 andre glas med hver 0,75 ml
(= 0,09 µg), og volumenet i de 2 sidste glas suppleres til 1 ml
med fosfatstødpudeopløsningen (4.2).
7.1.2 Oxytetracyklin og tetracyklin
Standardopløsningen (5) fortyndes med fosfatstødpudeopløsningen
(4.2) for at få en arbejdsstandardopløsning, hvis koncentration
svarer til 0,6 µg OTC-HCl eller TC-HCl pr. ml. Derpå tilberedes
med fosfatstødpudeopløsningen (4.2) 7 fortyndinger i testglas med
en gentagelse for hver fortynding som følger:
ml arbejdsstandardop-
løsningml fosfatstødpudeo-
pløsning (4.2)OTC-HCl eller TC-
HCl (µg/ml)
0,9 0,1 0,54
0,8 0,2 0,48
0,7 0,3 0,42
0,6 0,4 0,36
0,4 0,6 0,24
0,3 0,7 0,18
0,2 0,8 0,12
Ekstrakten (6.2) fortyndes med fosfatstødpudeopløsningen (4.2) til
en formodet koncentration af OTC-HCl eller TC-HCl på 0,48 µg/
ml. Dermed påfyldes 2 glas med hver 1 ml og 2 andre glas med
hver 0,5 ml (= 0,24 µg) og rumfanget i de 2 sidste glas suppleres
til 1 ml med fosfatstødpudeopløsningen (4.2).1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 21
▼B
7.2Podning af næringssubstratet
Testsubstratet (4.1) podes med kulturen (3.2) således, at der ved 590 mµ
og med en 5-cm-kuvette opnås en transmission på 85 % og med en 2-
cm-kuvette en transmission på 92 %, idet fotometeret indstilles til 100 %
transmission med det upodede testsubstrat (4.1).
7.3Podning
I hvert testglas (7.1.1 eller 7.1.2) fyldes der 9 ml podet substrat (7.2).
Påfyldningen skal ske så vidt muligt uden forureninger, men ikke
nødvendigvis under sterile forhold.
7.4Inkubation
Inkubationen sker obligatorisk i et vandbad, som ved konstant bevægelse
holdes på en temperatur på 37º C ± 0,1º C. Inkubationstiden vælges
således, at den tillader fremstilling af transmissionskurver med en for
nøjagtige målinger egnet stigning (normalt 2½ til 3 timer). Derefter
sprøjtes hvert af glassene med 1 ml formaldehydopløsning (4.6) for at
stoppe væksten.
7.5Måling af væksten
Transmissionen måles ved 590 mµ, idet fotometeret indstilles på 100 %
transmission med den klareste standardopløsning (svarende til den
højeste koncentration af antibiotika). På grund af de ringe turbiditetsdif-
ferencer for de enkelte glas anbefales det at benytte mindst 2-cm-
kuvetter, eller bedre endnu − 5-cm-kuvetter.
8.Beregning af resultaterne
Standardkurven fremstilles grafisk på millimeterpapir, idet fotometriske
transmissioner og koncentrationer af antibiotikum indføres over for hinanden.
Ekstraktens transmissionsværdier interpoleres på standardkurven og prøvens
indhold af antibiotikum beregnes.
9.Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved en og samme prøve ikke
være mere end 10 %.
3.BESTEMMELSE AF OLEANDOMYCIN
— VED DIFFUSION I AGARNÆRINGSSUBSTRAT —
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af oleandomycin i foderstoffer, koncentrater og
forblandinger, også ved tilstedeværelse af tetracykliner. Den laveste grænse
for bestemmeligheden andrager 0,5 ppm.
2.Princip
Prøven ekstraheres med en fortyndet metanolisk tris- (hydroxymetyl) amino-
metan-opløsning. Efter centrifugering fortyndes ekstrakten og dens
antibiotiske aktivitet bestemmes ved måling af oleandomycinets diffusion i
et med B. cereus podet agarnæringssubstrat. Diffusionen påvises ved hjælp
af de opstående hæmningszoner med testorganismen. Diameteren af disse
hæmningszoner er direkte proportional med logaritmen til koncentrationen
af antibiotikumet.
3.Testorganisme: B. cereus K 250 TR (1)(tetracyklinresistent)
3.1Opbevaring af stamkulturen
Et agarskråglas af næringssubstratet (4.1), som indeholder 100 µg oxyte-
tracyklin, podes med B. cereus og inkuberes ved ca. 30º C natten over.
Derefter opbevares kulturen i køleskab og podes hver 4. uge over i
agarskråglas.
3.2Fremstilling af sporesuspensionen
Et agarskråglas (3.1) opslæmmes med ca. 3 ml fysiologisk kogsaltopløs-
ning (4.3). Med denne suspension podes en Roux-kolbe, som indeholder1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 22
(1) Stamme isoleret af LUFA, Kiel.
▼B
300 ml af næringssubstratet (4.1), men med en agarkoncentration på
3—4 %. Efter en inkubationstid på 3 til 5 dage ved 28 til 30º C
opslæmmes kimene efter endt sporolering, som kontrolleres mikrosko-
pisk, med 15 ml ethanol og homogeniseres. Denne suspension er
holdbar mindst 5 måneder ved opbevaring i køleskab.
Ved hjælp af forsøgsplader med testsubstratet (4.2) findes den podnings-
mængde, som giver de størst mulige, men stadig skarpe hæmningszoner
med de forskellige anvendte koncentrationer af oleandomycin. Den
andrager normalt 0,1 til 0,2 ml/1000 ml. Podningen af næringssubstratet
skal ske ved 60º C.
4.Næringssubstrater og reagenser
4.1Kultursubstrat (1)
Glukose 1 g
Pepton, tryptisk fordøjet 10 g
Kødekstrakt 1,5 gGærekstrakt 3 g
Agar, alt efter kvalitet 10—20 g
Destilleret vand ad 1000 ml
Indstilles før brugen til pH 6,5.
4.2Testsubstrat (
1)
Substrat (4.1) indstillet til pH 8,8.
4.3 Fysiologisk kogsaltopløsning, steril.4.4 Ethanol 20 % (v/v).4.5 Metanol, ren.4.6 Tris (hydroxymetyl)-aminometan-opløsning p.a. 0,5 % (w/v).
4.7Ekstraktionsopløsning
Metanol, ren 50 ml
Destilleret vand 50 ml
Tris (hydroxymetyl)-amino-
metan p.a.0,5 g
4.8 Standardpræparat: Oleandomycin med kendt aktivitet.
5.Standardopløsninger
En mængde af standardpræparatet (4.8) opløses i 5 ml metanol (4.5) og
fortyndes med opløsningen (4.6) for at få en koncentration af oleandomycin
på 100 µg/ml.
Af denne stamopløsning fremstilles der ved fortynding med opløsningen (4.6)
en arbejdsstandardopløsning S
8, som indeholder 0,1 µg/ml oleandomycin.
Derefter fremstilles nedenståendekoncentrationer med opløsningen (4.6) ved
efter hinanden påfølgende fortyndinger (1 + 1):
S40,05 µg/ml
S20,025 µg/ml
S10,0125 µg/ml
6.Ekstraktion
Baseret på det formodede indhold af oleandomycin i prøven blandes en
afvejet stofmængde på 2 til 10 g med 100 ml af opløsningen (4.7), og der
rystes 30 minutter på et rystebord.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 23
(1) Ethvert næringssubstrat, som er normal handelsvare og har tilsvarende sammensætning,
og som giver samme resultater, kan anvendes.
▼B
Efter centrifugering udtages en aliquot del af ekstrakten og fortyndes med
opløsningen (4.6) for at opnå en formodet koncentration af oleandomycin på
0,1 µg/lm (= U8). Umiddelbart herefter fremstilles koncentrationerne U4,U2og U1med opløsningen (4.6) ved efter hinanden påfølgende fortyndinger
(1 + 1).
7.Testmetode
7.1Podning af næringssubstratet
Sporesuspensionen (3.2) podes ud på testsubstratet (4.2) ved 60º C.
7.2Fremstilling af pladerne
Testen sættes an som diffusionstest på plader med hver 4 koncentrations-
trin af standardopløsningen (S8,S4,S2,S1) og ekstraktet (U8,U4,U2,U1).
Hver plade skal ubetinget indeholde alle koncentrationer af standard og
prøve.
Derfor skal pladerne have en sådan størrelse, at der kan udstanses mindst
8 huller i substratlaget. Huldiameteren skal være 10 til 13 mm. Den
podede substratmængde (7.1) skal være beregnet således, at man får et
ensartet lag på ca. 2 mm tykkelse. Testen bør fortrinsvis udføres på
plader, som er fremstillet ved hjælp af en glasplade, hvorpå der lægges
en plandrejet aluminiums- eller kunststofring med 20 mm højde og
20 mm diameter.
I hullerne afpipetteres nøje afmålte mængder af antibiotikaopløsningen,
mellem 0,10 og 0,15 ml alt efter hullernes diameter.
For hver prøve gentages påfyldningen af hver koncentration mindst 4
gange, således at der pr. påsætning for hver prøve kan bedømmes 32
hæmningszoner.
7.3Inkubation
Der inkuberes i ca. 18 timer ved 28 til 30º C.
8.Bedømmelse
Hæmningszonernes diameter måles fortrinsvis ved projektion. Målingerne
indtegnes på semilogaritmepapir, idet logaritmen til koncentrationerne
indføres over for hæmningszonernes diameter. Både for standarden og for
ekstrakten trækkes lige linjer. Ved en test med ukompliceret forløb skal de
to lige linjer være parallelle.
Logaritmen til den relative aktivitet udregnes efter følgende formel:
U1þU2þU4þU8/C0S1/C0S2/C0S4/C0S8 ðÞ /C1 0;602
U4þU8þS4þS8/C0U1/C0U2/C0S1/C0S2
Faktisk aktivitet = formodet aktivitet × relativ aktivitet.
9.Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved én og samme prøve ikke
være mere end 10 %.
4.BESTEMMELSE AF TYLOSIN
— VED DIFFUSION I AGARNÆRINGSSUBSTRAT —
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af tylosin i foderstoffer, koncentrater og
forblandinger. Den laveste grænse for bestemmeligheden andrager 2 ppm.
2.Princip
Prøven behandles med en til 80º C opvarmet fosfatstødpudeopløsning pH 8
og ekstraheres derefter med metanol. Efter centrifugering fortyndes
ekstrakten, og dens antibiotiske aktivitet bestemmes ved måling af tylosinets
diffusion i et med Sarcina lutea podet agarnæringssubstrat. Diffusionen
påvises ved hjælp af de opstående hæmningszoner med testorganismen.
Diameteren af disse hæmningszoner er direkte proportional med logaritmen
til koncentrationen.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 24
▼B
3.Testorganisme: Sarcina lutea ATCC 9341
3.1Opbevaring af stamkulturen
Et agarskråglas af næringssubstratet (4.1) indstilles til pH 7,0, podes med
Sarcina lutea og inkuberes ved ca. 35º C natten over. Derefter opbevares
kulturen i køleskab og podes 1 gang om måneden over i agarskråglas.
3.2Fremstilling af kimsuspensionen
Et agarskråglas (3.1) opslæmmes med 2 til 3 ml steril, friskfremstillet
kogsaltopløsning (4.4). Med denne suspension podes en Roux-kolbe,
som indeholder 250 ml af substratet (4.1) pH 7,0. Efter en inkubationstid
på 24 timer ved 35º C opslæmmes kimene med 25 ml fysiologisk kogsal-
topløsning (4.4) og homogeniseres. Denne suspension fortyndes for at
opnå en transmission ved 650 mµ på ca. 75 %. Denne suspension er
holdbar 1 uge ved opbevaring i køleskab.
Ved hjælp af forsøgsplader med testsubstratet (4.1) findes den podnings-
mængde, som giver de størst mulige men endnu skarpe hæmningszoner
med de forskellige anvendte koncentrationer af tylosin. Udpodningen på
substratet skal ske ved en temperatur på mellem 48 og 50º C.
4.Næringssubstrat og reagenser
4.1Testsubstrat (1)
Glukose 1 g
Pepton, tryptisk fordøjet 10 gKødekstrakt 1,5 g
Gærekstrakt 3 g
Agar, alt efter kvalitet 10—20 gDestilleret vand ad 1000 ml
Til opbevaring af stamkulturen og fremstilling af kimsuspensionen
indstillede til pH 7,0 til bestemmelsen justeres til pH 8,0.
4.2Fosfatstødpudeopløsning, pH 8
Monokaliumfosfat KH
2PO4p.a. 0,523 g
Dikaliumfosfat K2HPO4p.a. 16,730 g
Destilleret vand ad 1000 ml
4.3Fosfatstødpudeopløsning, pH 7
Monokaliumfosfat KH2PO4p.a. 5,5 g
Dikaliumfosfat K2HPO4p.a. 13,6 g
Destilleret vand ad 1000 ml
4.4 Fysiologisk kogsaltopløsning, steril
4.5 Metanol, ren
4.6 Metanol 40 % (v/v)
4.7 Blanding af fosfatstødpudeopløsning (4.2) og metanol, ren: 60/40 i vol.4.8 Standardpræparat: Tylosin med kendt aktivitet.
5.Standardopløsninger
Standardpræparatet (4.8) tørres 3 timer ved 60º C i vakuumtørreskabet ved
5 mm Hg. En afvejet stofmængde på 10 til 50 mg opløses med 5 ml metanol
(4.5) i en målekolbe og fortyndes derpå med fostfatstødpudeopløsningen pH
7 (4.3) for at opnå en koncentration af tylosin base på 1000 µg/ml.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 25
(1) Ethvert næringssubstrat, som er normal handelsvare og har tilsvarende sammensætning,
og som giver samme resultater, kan anvendes.
▼B
Af denne stamopløsning fremstilles der ved fortynding med blandingen (4.7)
en arbejdsstandardopløsning S8, som indeholder 2 µg tylosin base/ml.
Herefter fremstilles nedenstående koncentrationer med blandingen (4.7) ved
efter hinanden påfølgende fortyndinger (1 + 1):
S41 µg/ml
S20,5 µg/ml
S10,25 µg/ml
6.Ekstraktion
Der afvejes ved koncentrater 10 g ved forblandinger og foderblandinger 20 g.
Den afvejede stofmængde opslæmmes med 60 ml fosfatstødpudeopløsning
pH 8 (4.2) opvarmet til 80º C og homogeniseres 2 minutter (køkkenmaskine,
Ultra-Turrax etc.).
Efter henstand i 10 minutter tilsættes 40 ml metanol (4.5) og der homogeni-
seres på ny i 5 minutter. Ekstrakten centrifugeres og en aliquot del fortyndes
med blandingen (4.7) for at opnå en formodet koncentration af tylosin på
2 µg/ml (= U8). Umiddelbart herefter fremstilles koncentrationerne U4,U2og
U1med blandingen (4.7) ved efter hinanden påfølgende fortyndinger (1 + 1).
Ved indhold på under 10 ppm inddampes ekstrakten ved 35º C til tørhed i en
rotationsfordamper og opslæmmes med metanol 40 % (4.6).
7.Testmetode
7.1Podning af næringssubstratet
Kim-suspensionen (3.2) udpodes på det til pH 8,0 justerede testsubstrat
(4.1) ved 48 til 50º C.
7.2Fremstilling af pladerne
Testen sættes an som diffusionstest på plader med hver 4 koncentrations-
trin af standardopløsningen (S8,S4,S2,S1) og ekstraktet (U8,U4,U2,U1).
Hver plade skal ubetinget indeholde alle 4 koncentrationer af standard og
prøve.
Derfor skal pladerne have en sådan størrelse, at der kan udstanses mindst
8 huller i substratlaget. Huldiameteren skal være 10 til 13 mm. Den
podede substratmængde (7.1) skal være beregnet således, at man får et
ensartet lag på ca. 2 mm tykkelse. Testen bør fortrinsvis udføres på
plader, som er fremstillet ved hjælp af en glasplade, hvorpå der lægges
en plandrejet aluminiums- eller kunststofring med 20 mm højde og
200 mm diameter.
I hullerne afpipetteres nøje afmålte mængder af antibiotikaopløsningen,
mellem 0,10 og 0,15 ml alt efter hullernes diameter.
For hver prøve gentages påfyldningen af hver koncentration mindst 4
gange, således at der pr. påsætning for hver prøve kan bedømmes 32
hæmningszoner.
7.3Inkubation
Der inkuberes natten over ved 35 til 37º C.
8.Bedømmelse
Hæmningszonernes diameter måles fortrinsvis ved projektion. Målingerne
indtegnes på semilogaritmepapir, idet logaritmen til koncentrationen indføres
over for diameteren af hæmningszonerne. Både for standarden og for
ekstrakten trækkes lige linjer. Ved en test med ukompliceret forløb skal de
to lige linjer være parallelle. — Logaritmen til den relative aktivitet udregnes
efter følgende formel:
U1þU2þU4þU8/C0S1/C0S2/C0S4/C0S8 ðÞ /C1 0;602
U4þU8þS4þS8/C0U1/C0U2/C0S1/C0S2
Faktisk aktivitet = formodet aktivitet × relativ aktivitet.
9.Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved én og samme prøve ikke
være mere end 10 %.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 26
▼B
5.BESTEMMELSE AF VIRGINIAMYCIN
— VED DIFFUSION I AGARNÆRINGSSUBSTRAT —
1.Formål og anvendelsesområde
Metoden tillader bestemmelse af virginiamycin i foderstoffer, koncentrater og
forblandinger. Den laveste grænse for bestemmeligheden andrager 2 ppm.
2.Princip
Prøven ekstraheres med en metanolisk Tween-80 opløsning. Efter centrifuge-
ring eller filtrering fortyndes ekstrakten og dens antibiotiske aktivitet
bestemmes ved måling af virginiamycinets diffusion i et med Sarcina lutea
podet agarnæringssubstrat. Diffusionen påvises ved hjælp af de opstående
hæmningszoner med testorganismen. Diameteren af disse hæmningszoner er
direkte proportional med logaritmen til koncentrationen.
3.Testorganisme: Sarcina lutea ATCC 9341
3.1Opbevaring af stamkulturen
Et agarskråglas af testsubstratet (4.1) podes med S. lutea og inkuberes
ved ca. 35º C natten over. Derefter opbevares kulturen i køleskab og
podes hver 14. dag over i agarskråglas.
3.2Fremstilling af kim-suspensionen
Et agarskråglas (3.1) opslæmmes med 2 til 3 ml steril, friskfremstillet
kogsaltopløsning (4.3). Med denne suspension podes en Roux-kolbe,
som indeholder 250 ml af substratet (4.1). Efter en inkubationstid på 24
timer ved 35º C opslæmmes kimene med 25 ml fysiologisk kogsaltopløs-
ning (4.3) og homogeniseres. Denne suspension fortyndes for at opnåen
transmission ved 650 mµ på ca. 75 %. Denne suspension er holdbar 1
uge ved opbevaring i køleskab.
Ved hjælp af forsøgsplader med testsubstratet (4.1) findes den podnings-
mængde, som giver de størst mulige, men stadig skarpe hæmningszoner
med de forskellige anvendte koncentrationer af virginiamycin. Podningen
af næringssubstratet skal ske ved en temperatur på mellem 48 og 50º C.
4.Næringssubstrat og reagenser
4.1Testsubstrat (1)
Glukose 1 g
Pepton, tryptisk fordøjet 10 g
Kødekstrakt 1,5 g
Gærekstrakt 3 gAgar, alt efter kvalitet 10—20 g
Destilleret vand ad 1000 ml
Før brugen justeres til pH 6,5.
4.2Fosfatstødpudeopløsning, pH 6
Monokaliumfosfat KH
2PO4p.a. 8,0 g
Dikaliumfosfat K2HPO4p.a. 2,0 g
Destilleret vand ad 1000 ml
4.3 Fysiologisk kogsaltopløsning, steril.
4.4 Metanol, ren.4.5 Blanding af fosfatstødpudeopløsning (4.2) og metanol, ren: 80/20 i vol.4.6 Metanolisk Tween-80-opløsning 0,5 % (w/v).
4.7 Standardpræparat: Virginiamycin med kendt aktivitet.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 27
(1) Ethvert næringssubstrat, som er normal handelsvare og har tilsvarende sammensætning,
og som giver samme resultater, kan anvendes.
▼B
5.Standardopløsninger
Der fremstilles en metanolisk opløsning af standardpræparatet (4.7), som
indeholder 800 µg virginiamycin/ml. Af denne stamopløsning fremstilles der
ved fortynding med blandingen (4.5) en arbejdsstandardopløsning S8, som
indeholder 1 µg virginiamycin/ml. Derefter fremstilles nedenstående koncen-
trationer med blandingen (4.5) ved efter hinanden påfølgende fortyndinger
(1 + 1):
S40,5 µg/ml
S20,25 µg/ml
S10,125 µg/ml
6.Ekstraktion
6.1Ved indhold af virginiamycin, lige med eller under 50 ppm
Der afvejes 10 til 20 g af prøven, tilsættes 100 ml af opløsningen (4.6)
og rystes 30 minutter på et rystebord. Derefter centrifugeres eller filtreres
20 ml af den klare opløsning udtages og inddampes i en rotationsfor-
damper til tørhed. Inddampningsresten opslæmmes i 20 ml eller mere af
blandingen (4.5) for at opnå en formodet koncentration af virginiamycin
på 1 µg/ml (= U8). Umiddelbart herefter fremstilles koncentrationerne U4,
U2og U1med blandingen (4.5) ved efter hinanden påfølgende fortyn-
dinger (1 + 1).
6.2Ved indhold af virginiamycin over 50 ppm
Der afvejes 1 til 10 g af prøven, tilsættes 100 ml af opløsningen (4.6) og
rystes 30 minutter på et rystebord. Derefter centrifugeres eller filtreres og
fortyndes med blandingen (4.5) for at opnå en formodet koncentration af
virginiamycin på 1 µg/ml (= U8). Umiddelbart herefter fremstilles
koncentrationerne U4,U2og U1som beskrevet under 6.1.
7.Testmetode
7.1Podning af næringssubstratet
Kim-suspensionen (3.2) podes ud på testsubstratet (4.1) ved 48 til 50º C.
7.2Fremstilling af pladerne
Testen sættes an som diffusionstest på plader med hver 4 koncentrations-
trin af standardopløsningen (S8,S4,S2,S1) og ekstraktet (U8,U4,U2,U1).
Hver plade skal ubetinget indeholde alle 4 koncentrationer af standard og
prøve.
Derfor skal pladerne have en sådan størrelse, at der kan udstanses mindst
8 huller i substratlaget; huldiameteren skal være 10 til 13 mm. Den
podede substratmængde (7.1) skal være beregnet således, at man får et
ensartet lag på ca. 2 mm tykkelse. Testen bør fortrinsvis udføres på
plader, som er fremstillet ved hjælp af en glasplade, hvorpå der læggesen
plandrejet aluminiums- eller kunststofring med 20 mm højde og 200 mm
diameter. I hullerne afpipetteres nøje afmålte mængder af antibiotikao-
pløsningen på mellem 0,10 og 0,15 ml, alt efter hullernes diameter.
For hver prøve gentages påfyldningen af hver koncentration mindst 4
gange, således at der pr. påsætning for hver prøve kan bedømmes 32
hæmningszoner.
7.3Inkubation
Der inkuberes i 18 time ved 28 til 30º C.
8.Bedømmelse
Hæmningszonernes diameter måles fortrinsvis ved projektion. Målingerne
indtegnes på semilogaritmepapir, idet logaritmen til koncentrationerne
indføres over for hæmningszonernes diameter. Både for standarden og for
ekstrakten trækkes lige linjer. Ved en test med ukompliceret forløb skal de
to lige linjer være parallelle.
Logaritmen til den relative aktivitet udregnes ved hjælp af følgende formel:1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 28
▼B
U1þU2þU4þU8/C0S1/C0S2/C0S4/C0S8 ðÞ /C1 0;602
U4þU8þS4þS8/C0U1/C0U2/C0S1/C0S2
Faktisk aktivitet = formodet aktivitet × relativ aktivitet.
9.Reproducerbarhed
Differencen mellem to parallelbestemmelser må ved én og samme prøve ikke
være mere end 10 % relativt.1972L0199 — DA — 05.05.1972 — 000.001 — 29