Този  документ  е средство  за документиране  и не обвързва  институциите  
►B РЕГЛАМЕНТ  (ЕО) № 440/2008 НА КОМИСИЯТА  
от 30 май 2008 година  
за определяне  на методи  за изпитване  в съответствие  с Регламент  (ЕО) № 1907/2006 на 
Европейския  парламент  и на Съвета  относно  регистрацията , оценката , разрешаването  и 
ограничаването  на химикали  (REACH)  
(текст  от значение  за ЕИП ) 
(ОВ L 142, 31.5.2008 г., стр. 1) 
Изменен  със: 
Официален  вестник  
№ страница  дата 
►M1 Регламент  (ЕО) № 761/2009 на Комисията  от 23 юли 2009 година  L 220  1  24.8.2009 г. 
►M2 Регламент  (ЕС) № 1152/2010 на Комисията  от 8 декември  2010 
година  L 324  13  9.12.2010 г. 
►M3 Регламент  (ЕС) № 640/2012 на Комисията  от 6 юли 2012 година  L 193  1  20.7.2012 г. 
►M4 Регламент  (ЕС) № 260/2014 на Комисията  от 24 януари  2014 
година  L 81  1  19.3.2014 г. 
►M5 Регламент  (ЕС) № 900/2014 на Комисията  от 15 юли 2014 година  L 247  1  21.8.2014 г. 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1
РЕГЛАМЕНТ  (ЕО) № 440/2008 НА КОМИСИЯТА  
от 30 май 2008 година  
за определяне  на методи  за изпитване  в съответствие  с 
Регламент  (ЕО) № 1907/2006 на Европейския  парламент  и на 
Съвета  относно  регистрацията , оценката , разрешаването  и 
ограничаването  на химикали  (REACH)  
(текст  от значение  за ЕИП ) 
КОМИСИЯТА  НА ЕВРОПЕЙСКИТЕ  ОБЩНОСТИ , 
като взе предвид  Договора  за създаване  на Европейската  общност , 
като взе предвид  Регламент  (ЕО) № 1907/2006 на Европейския  
парламент  и на Съвета  от 18 декември  2006 г. относно  
регистрацията , оценката , разрешаването  и ограничаването  на 
химикали  (REACH), за създаване  на Европейска  агенция  по 
химикали , за изменение  на Директива  1999/45/ ЕО и за отмяна  на 
Регламент  (ЕИО ) № 793/93 на Съвета  и Регламент  (ЕО) № 1488/94 
на Комисията , както  и на Директива  76/769/ЕИО  на Съвета  и 
директиви  91/155/ЕИО , 93/67/ЕИО , 93/105/ ЕО и 2000/21/ ЕО на 
Комисията  ( 1 ), и по-специално  член  13, параграф  3 от него , 
като има предвид , че: 
(1) В съответствие  с Регламент  (ЕО) № 1907/2006 на общностно  
равнище  следва  да се приемат  методи  за изпитване  за целите  
на изпитванията  на вещества , когато  подобни  изпитвания  се 
изискват , за да се събере  информация  за характерните  
свойства  на веществата . 
(2) Директива  67/548/ЕИО  на Съвета  от 27 юни 1967 г. за 
сближаването  на законовите , подзаконовите  и админ­  
истративните  разпоредби  относно  класификацията , опак­  
оването  и етикетирането  на опасни  вещества  ( 2 ) посочва  в 
приложение  V методите  за определяне  на физикохимичните  
свойства , токсичността  и екотоксичността  на веществата  и 
препаратите . Приложение  V към Директива  67/548/ЕИО  се 
заличава  с Директива  2006/121/ ЕО на Европейския  
парламент  и на Съвета , считано  от 1 юни 2008 г. 
(3) Методите  за изпитване , съдържащи  се в приложение  V към 
Директива  67/548/ ЕИО , следва  да бъдат  включени  в 
настоящия  регламент . 
(4) Настоящият  регламент  не изключва  прилагането  на други  
методи  на изпитване , при условие  че те се прилагат  в съотв­  
етствие  с член  13, параграф  3 от Регламент  (ЕО) № 1907/2006.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 2  
( 1 ) ОВ L 396, 30.12.2006 г., стр. 1. 
( 2 ) ОВ X 196, 16.8.1967 г., стр. 1. Директива , последно  изменена  с 
Директива  2006/121/ ЕО на Европейския  парламент  и на Съвета  (ОВ 
L 396, 30.12.2006 г., стр. 850) —  ще последва  актуализация  със 
съответни  препратки  веднага  след публикуването  на 30-то адаптиране  
към техническия  прогрес .
 (5) Принципите  на заместване , намаляване  и усъвършенстване  на 
използването  на животни  в процедури  следва  да бъдат  взети  
предвид  изцяло  при изготвянето  на методи  на изпитване , по- 
специално  в случаите , когато  са налице  подходящи  одобрени  
методи , които  да заместят , намалят  или усъвършенстват  
изпитванията  с животни . 
(6) Разпоредбите  на настоящия  регламент  са в съответствие  със 
становището  на комитета , създаден  съгласно  член  133 от 
Регламент  (ЕО) № 1907/2006,  
ПРИЕ  НАСТОЯЩИЯ  РЕГЛАМЕНТ : 
Член  1 
Методите  на изпитване , които  следва  да се прилагат  за целите  на 
Регламент  (ЕО) № 1907/2006, са посочени  в приложението  към 
настоящия  регламент . 
Член  2 
Когато  е целесъобразно , Комисията  ще преразгледа  методите  на 
изпитване , съдържащи  се в настоящия  регламент , с цел заместване , 
намаляване  или усъвършенстване  на изпитванията  върху  гръбначни  
животни . 
Член  3 
Всички  позовавания  на приложение  V към Директива  67/548/ЕИО  
се тълкуват  като позовавания  на настоящия  регламент . 
Член  4 
Настоящият  регламент  влиза  в сила  в деня  след  публикуването  му в 
Официален  вестник  на Европейския  съюз . 
Той се прилага  от 1 юни 2008 г. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 3
 
ПРИЛОЖЕНИЕ  
ЧАСТ  А: МЕТОДИ  ЗА ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ФИЗИКОХИМИЧНИ  
СВОЙСТВА  
СЪДЪРЖАНИЕ  
А.1. ТЕМПЕРАТУРА  НА ТОПЕНЕ /ЗАМРЪЗВАНЕ  
А.2. ТЕМПЕРАТУРА  НА КИПЕНЕ  
А.3. ОТНОСИТЕЛНА  ПЛЪТНОСТ  
А.4. НАЛЯГАНЕ  НА ПАРИТЕ  
А.5. ПОВЪРХНОСТНО  НАПРЕЖЕНИЕ  
А.6. РАЗТВОРИМОСТ  ВЪВ  ВОДА  
А.8. КОЕФИЦИЕНТ  НА РАЗПРЕДЕЛЕНИЕ  
А.9. ТОЧКА  НА ВЪЗПЛАМЕНЯВАНЕ  
А.10. ЗАПАЛИМОСТ  (ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА ) 
А.11. ЗАПАЛИМОСТ  (ГАЗОВЕ ) 
А.12. ЗАПАЛИМОСТ  (ПРИ  КОНТАКТ  С ВОДА ) 
А.13. ПИРОФОРНИ  СВОЙСТВА  НА ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА  И 
ТЕЧНОСТИ  
А.14. ЕКСПЛОЗИВНИ  СВОЙСТВА  
А.15. ТЕМПЕРАТУРА  НА САМОЗАПАЛВАНЕ  (ТЕЧНОСТИ  И 
ГАЗОВЕ ) 
А.16. ОТНОСИТЕЛНА  ТЕМПЕРАТУРА  НА САМОЗАПАЛВАНЕ  
НА ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА  
А.17. ОКСИДИРАЩИ  СВОЙСТВА  (ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА ) 
А.18. СРЕДНО  БРОЙНО  МОЛЕКУЛНО  ТЕГЛО  И РАЗПРЕД­  
ЕЛЕНИЕ  НА МОЛЕКУЛНОТО  ТЕГЛО  НА ПОЛИМЕРИ  
А.19. НИСКОМОЛЕКУЛНО  ТЕГЛОВНО  СЪДЪРЖАНИЕ  НА 
ПОЛИМЕРИ  
А.20. ПОВЕДЕНИЕ  НА РАЗТВАРЯНЕ /ЕКСТРАКЦИЯ  НА 
ПОЛИМЕРИ  ВЪВ  ВОДА  
A.21. ОКСИДИРАЩИ  СВОЙСТВА  (ТЕЧНОСТИ ) 
A.22. ПРЕТЕГЛЕНА  СПРЯМО  ДЪЛЖИНАТА  СРЕДНОГЕОМЕ­  
ТРИЧНА  СТОЙНОСТ  НА ДИАМЕТЪРА  НА ВЛАКНА  
▼M4 
A.23. КОЕФИЦИЕНТ  НА РАЗПРЕДЕЛЕНИЕ  (1-ОКТАНОЛ / 
ВОДА ): МЕТОД  НА БАВНО  РАЗБЪРКВАНЕ  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 4
 
А.1. ТЕМПЕРАТУРА  НА ТОПЕНЕ /ЗАМРЪЗВАНЕ  
1. МЕТОД  
Повечето  от описаните  методи  се основават  на Ръководството  за 
провеждане  на изпитвания  на ОИСР  (1). Основните  принципи  са 
дадени  в препратки  (2) и (3). 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Описаните  методи  и апаратура  се прилагат  за определяне  на 
температурата  на топене  на веществата  без никакви  ограничения  
относно  тяхната  степен  на чистота . 
Изборът  на метода  зависи  от природата  на веществото , което  
трябва  да се изследва . По тази причина  ограничаващият  
фактор  ще бъде  свързан  с това, дали  веществото  може  да се 
приведе  в прахообразно  състояние  (лесно  или трудно ) или не. 
За някои  вещества  е по-подходящо  да се определя  
температурата  на замръзване  или втвърдяване . Ето защо  в този 
метод  са включени  стандарти  и за тези определения . 
Когато , поради  по-особените  свойства  на веществото , 
определянето  на гореспоменатите  параметри  е по-трудно , може  
да се определи  точката  на застиване . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Температурата  на топене  се определя  като температурата , при 
която  се извършва  фазовият  преход  от твърдо  към течно  
състояние  при атмосферно  налягане ; тази температура  напълно  
съответства  на температурата  на замръзване . 
Фазовият  преход  при много  вещества  се извършва  в 
температурен  интервал , наричан  „интервал  на топене “. 
Превръщане  на мерните  единици  (К към  o С) 
t = Т - 273,15  
t: Целзиева  температура , градус  Целзий  ( o С) 
Т: термодинамична  температура , Келвин  (К) 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не във всички  случаи , когато  се изследва  ново  вещество , е 
необходимо  да се използват  вещества  за сравнение . Преди  
всичко  те трябва  да служат  за периодична  проверка  на 
действието  на метода  и да позволяват  сравнение  с резултатите , 
получени  по други  методи . 
Някои  калибровъчни  вещества  са изброени  в препратка  (4). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 5
 
1.4. ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАТЕЛНИЯ  МЕТОД  
Определя  се температурата  (температурният  интервал ) на 
фазовия  преход  от твърдо  към течно  или от течно  към твърдо  
състояние . На практика , когато  се нагрява /охлажда  проба  от 
изследваното  вещество  при атмосферно  налягане , се определят  
началната  температура  на топене /замръзване  и температурата  в 
последната  фаза  на топенето /замръзването . Описани  са пет типа  
методи , а именно  — капилярен  метод , методи  с горещи  
подложки , методи  за определяне  на температурата  на 
замръзване , методи  на термичния  анализ  и определяне  на 
точката  на застиване  (разработен  за нефтени  масла ). 
В някои  случаи  е по-подходящо  вместо  температурата  на топене  
да се измери  температурата  на замръзване . 
1.4.1.  Метод  с капилярка  
1.4.1.1.  Устройства  за температура  на топене  с течностна  баня  
Малко  количество  от фино  стритото  вещество  се поставя  в 
капилярка  и се стръсква  в плътна  маса . Капилярката  се 
нагрява  заедно  с термометър . Повишаването  на температурата  
се регулира  така, че да не надвишава  1 К/min по време  на 
самото  топене . Определят  се началната  и крайната  температура  
на топене . 
1.4.1.2.  Устройства  за температура  на топене  с метален  блок  
Както  е описано  в 1.4.1.1, но капилярката  и термометърът  са 
разположени  в нагрят  метален  блок  и могат  да се наблюдават  
през отвори  в блока . 
1.4.1.3.  Отчитане  с фотоклетка  
Пробата  в капилярката  се нагрява  автоматично  в метален  
цилиндър . С помощта  на отвор  в цилиндъра  светлинен  лъч се 
насочва  през веществото  към прецизно  калибрирана  фотоклетка . 
В процеса  на топене  оптичните  свойства  на повечето  вещества  
се променят  от непрозрачно  към прозрачно . Интензитетът  на 
светлината , която  достига  до фотоклетката , се увеличава  и тя 
изпраща  сигнал  за спиране  към цифровия  индикатор , отчитащ  
температурата  на платинов  съпротивителен  термометър , разп­  
оложен  в нагревателната  камера . Този  метод  не е подходящ  за 
някои  силнооцветени  вещества . 
1.4.2.  Горещи  подложки  
1.4.2.1.  Кофлеров  апарат  с гореща  пръчка  
Кофлеровият  апарат  с гореща  пръчка  използва  две парчета  
метал  с различна  топлопроводимост , нагрявани  електрически , с 
пръчка , направена  така, че температурният  градиент  да е почти  
линеен  по дължината  ѝ. Температурата  на горещата  пръчка  
може  да се изменя  по дължината  и между  283 и 573 К се 
отчита  със специално  устройство , включващо  плъзгач  с 
показалец  и етикети , направени  специално  за дадената  пръчка . 
За да се определи  температурата  на топене , веществото  се 
разстила  на тънък  пласт  направо  по повърхността  на горещата  
пръчка . След  няколко  секунди  се появява  рязка  разделителна  
линия  между  течната  и твърдата  фаза . Температурата  на раздел­  
ителната  линия  се отчита , като стрелката  се нагласява  да лежи  
върху  нея. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 6
 
1.4.2.2.  Микроскоп  за стапяне  
Използват  се няколко  вида  горещи  масички  за микроскопа , 
които  служат  за определяне  на температурата  на топене  на 
съвсем  малки  количества  от веществото . При повечето  от 
горещите  масички  температурата  се измерва  с чувствителна  
термодвойка , но понякога  се използват  и живачни  термометри . 
Типичният  апарат  за температура  на топене  с микроскоп  с 
гореща  масичка  има нагревателна  камера , съдържаща  метална  
плочка , върху  която  пробата  се поставя  на стъкло . В центъра  
на металната  плочка  има отвор , през който  навлиза  светлината  
от осветителното  огледало  на микроскопа . Когато  се използва , 
камерата  е затворена  със стъклена  пластинка , така че да се 
изолира  въздухът  около  пробата . 
Нагряването  на пробата  се регулира  с реостат . За много  точни  
измервания  на оптически  анизотропни  вещества  може  да се 
използва  поляризирана  светлина . 
1.4.2.3.  Менискусен  метод  
Този  метод  се използва  специално  за полиамиди . 
Визуално  се определя  температурата , при която  се измества  
менискусът  от силиконово  масло , поставено  между  горещата  
подложка  и покривното  стъкло , което  се поддържа  от пробния  
образец  от полиамид . 
1.4.3.  Метод  за определяне  на температурата  на замръзване  
Пробата  се слага  в специална  епруветка  и се поставя  в апарат  за 
определяне  на температурата  на замръзване . По време  на охла­  
ждането  пробата  се разбърква  внимателно  без прекъсване , а 
температурата  се измерва  на подходящи  интервали  от време . 
Когато  температурата  остане  постоянна  при няколко  последов­  
ателни  измервания , тази температура  (коригирана  с грешката  на 
термометъра ) се отчита  като температура  на замръзване . 
Трябва  да се избягва  преохлаждането , като се поддържа  
равновесие  между  твърдата  и течната  фаза . 
1.4.4.  Термичен  анализ  
1.4.4.1.  Диференциален  термичен  анализ  (ДТА) 
При тази техника  се прави  запис  на разликата  в температурите  
на веществото  и на сравнителния  материал  като функция  от 
температурата , като веществото  и сравнителният  материал  са 
подложени  на една  и съща  контролирана  температурна  
програма . Когато  пробата  претърпява  преход , свързан  с 
промяна  на енталпията , тази промяна  се проявява  като 
ендотермично  (топене ) или екзотермично  (замръзване ) 
отклонение  от основната  линия  на записа  на температурата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 7
 
1.4.4.2.  Диференциална  сканираща  калориметрия  (ДСК ) 
При тази техника  се прави  запис  на разликата  в подадената  
енергия  към веществото  и към сравнителния  материал  като 
функция  от температурата , като веществото  и сравнителният  
материал  са подложени  на една  и съща  контролирана  
температурна  програма . Тази  енергия  представлява  енергията , 
необходима  да се установи  нулева  температурна  разлика  
между  веществото  и сравнителния  материал . Когато  пробата  
претърпява  преход , свързан  с промяна  на енталпията , тази 
промяна  се регистрира  като ендотермично  (топене ) или 
екзотермично  (замръзване ) отклонение  от основната  линия  на 
записа  на топлинния  поток . 
1.4.5.  Точка  на застиване  
Този  метод  е разработен  за нефтени  масла  и е подходящ  за 
маслообразни  вещества  с ниски  температури  на топене . 
След  предварително  нагряване  пробата  се охлажда  с определена  
скорост  и характеристиките  ѝ на течливост  се изследват  на 
интервали  от 3 К. Най-ниската  температура , при която  все 
още се наблюдава  движение  на веществото , се отчита  като 
точка  на застиване . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Приложимостта  и точността  на различните  методи , които  се 
използват  за определяне  на температурата  на топене /интервала  
на топене , са дадени  в следните  таблици : 
ТАБЛИЦА : ПРИЛОЖИМОСТ  НА МЕТОДИТЕ  
А. Капилярни  методи  
Метод  за измерване  Вещества , които  
могат  да се 
разпрашават  Вещества , които  
се разпрашават  
трудно  Температурен  
интервал  Оценка  на 
точността  ( 1 ) Съществуващ  
стандарт  
Устройства  за 
температура  на 
топене  с водна  
баня  да само  в 
известна  
степен  от 273 до 
573 K ± 0,3 К JIS K 0064 
Устройства  за 
температура  на 
топене  с метален  
блок  да само  в 
известна  
степен  от 293 до > 
573 К ± 0,5 K ISO 1218 (E) 
Отчитане  с 
фотоклетка  да няколко  с 
допълнителни  
приспосо­  
бления  от 253 до 
573 K ± 0,5 K  
( 1 ) Зависи  от типа  на апарата  и степента  на чистота  на веществото . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 8
 
Б. Методи  с горещи  подложки  и методи  със замразяване  
Метод  за измерване  Вещества , които  
могат  да се 
разпрашават  Вещества , които  
се разпрашават  
трудно  Температурен  
интервал  Оценка  на 
точността  ( 1 ) Съществуващ  
стандарт  
Кофлер  с гореща  
пръчка  да не от 283 до > 
573 K ± 1К АNSI/ASTM D 
3451-76 
Микроскоп  за 
стапяне  да само  в 
известна  
степен  от 273 до > 
573 K ± 0,5 K DIN 53736 
Менискусен  
метод  не специално  за 
полиамиди  от 293 до > 
573 K ± 0,5 K ISO 1218 (E) 
Методи  за 
температура  на 
замръзване  да да от 223 до 573 
K ± 0,5 K например  BS 
4695  
( 1 ) Зависи  от типа  на апарата  и степента  на чистота  на веществото . 
В. Термичен  анализ  
Метод  за измерване  Вещества , които  
могат  да се 
разпрашават  Вещества , които  
се разпрашават  
трудно  Температурен  
интервал  Оценка  на 
точността  ( 1 ) Съществуващ  
стандарт  
Диференциален  
термичен  анализ  да да от 173 до 
1 273 K до 600 K 
± 0,5 K до 
1 273 K 
± 2,0 K ASTM E 537-76 
Диференциална  
сканираща  
калориметрия  да да от 173 до 
1 273 K до 600 K 
± 0,5 K до 
1 273 K 
± 2,0 K ASTM E 537-76  
( 1 ) Зависи  от типа  на апарата  и от степента  на чистота  на веществото . 
Г. Точка  на застиване  
Метод  за измерване  Вещества , които  
могат  да се 
разпрашават  Вещества , които  
се разпрашават  
трудно  Температурен  
интервал  Оценка  на 
точността  ( 1 ) Съществуващ  
стандарт  
Точка  на 
застиване  за нефтени  
масла  и 
маслени  
субстанции  за нефтени  
масла  и 
маслени  
субстанции  от 223 до 323 
K ± 3,0 K ASTM D 97-66  
( 1 ) Зависи  от типа  на апарата  и от степента  на чистота  на веществото . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДИТЕ  
Процедурите  на почти  всички  методи  за изпитване  са описани  в 
международни  и национални  стандарти  (вж. допълнение  1). 
1.6.1.  Методи  с капилярна  тръбичка  
При бавно  повишаване  на температурата  фино  разпратените  
вещества  обикновено  преминават  през фазите  на топене , 
показани  на фигура  1. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 9
 
Фигура  1
 
При определяне  на температурата  на топене  се отчитат  
температурата  в началото  на топенето  и тази в крайната  му фаза . 
1.6.1.1.  Прибори  за определяне  на температурата  на топене  в апарат  
с течностна  баня  
На фигура  2 е показан  един  тип стандартизиран  апарат  за 
температура  на топене , изработен  от стъкло  (JIS K 0064); 
всички  размери  са в милиметри . 
Фигура  2
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 10
 
Течност  за банята : 
Трябва  да се избере  подходяща  течност . Изборът  на течността  
зависи  от температурата  на топене , която  трябва  да се определя : 
например  течен  парафин  — за температури  на топене  не по- 
високи  от 473 К, силиконово  масло  — за температури  на 
топене  не по-високи  от 573 К. 
За температури  на топене  над 523 К може  да се използва  смес , 
която  се състои  от три части  сярна  киселина  и две части  калиев  
сулфат  (масово  съотношение ). Ако се използва  такава  течност , 
трябва  да се вземат  подходящи  предпазни  мерки . 
Термометър : 
Могат  да се използват  само  такива  термометри , които  съотв­  
етстват  на изискванията  на посочените  по-долу  или на еквив­  
алентни  стандарти : 
АЅТМ  Е 1-71, DIN 12770, JIS K 8001.  
Процедура  на измерване : 
Сухото  вещество  се стрива  на фин прах  в хаванче  и се поставя  в 
капилярка , запоена  от едната  страна , така че нивото  на 
запълване  да е приблизително  3 mm, след  като веществото  се 
сбие  в плътна  маса . За да се получи  равномерно  уплътнена  
проба , капилярката  трябва  да се пуска  от височина  около  
700 mm през вертикална  стъклена  тръба  върху  часовниково  
стъкло . 
Напълнената  капилярка  се поставя  в банята , така че средната  
част на живачния  резервоар  на термометъра  да се допира  до 
нея в областта , където  е разположена  пробата . Обикновено  
капилярката  се въвежда  в апарата  около  10 К преди  да се 
достигне  температурата  на топене . 
Течността  в банята  се нагрява  по такъв  начин , че покачването  на 
температурата  да е приблизително  3 K/min. Течността  трябва  да 
се разбърква . При около  10 К под очакваната  температура  на 
топене  скоростта  на покачване  на температурата  се регулира  
така, че да не надвишава  1 K/min.  
Изчисления : 
Температурата  на топене  се изчислява , както  следва : 
Т = T  D + 0,00016 ( Т D – Т Е ) n 
където : 
Т = коригираната  температура  на топене  в К 
Т D = температурата , отчетена  по термометъра  D в К 
Т Е = температурата , отчетена  по термометъра  Е в К 
n = броя  деления  на живачната  нишка  на термометър  D при 
нивото  на потапяне  на ствола  му. 
1.6.1.2.  Уреди  за измерване  на температурата  на топене  в метален  
блок  
Апаратура  
Тя се състои  от: 
— цилиндричен  метален  блок , чиято  горна  част е куха  и 
образува  камера  (вж. фигура  3), 
— метална  запушалка  с два или повече  отвори , които  
позволяват  капилярките  да се монтират  в металния  блок , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 11
 
— нагревателна  система  за металния  блок , осигурена  например  
от електрическо  съпротивление , включено  в блока , 
— реостат  за регулиране  на входното  напрежение  (ако се 
използва  електрическо  нагряване ), 
— четири  прозорчета  от термоустойчиво  стъкло  на страничните  
стени  на камерата , диаметрално  разположени  и под прав  
ъгъл  едно  спрямо  друго . Пред  едно  от тези прозорчета  се 
монтира  окуляр  за наблюдение  на капилярката . Другите  три 
прозорчета  се използват  за осветяване  на вътрешността  на 
апарата  с помощта  на лампи , 
— капилярка  от термоустойчиво  стъкло , запоена  в единия  край  
(вж. 1.6.1.1).  
Термометър : 
Вижте  стандартите , посочени  в 1.6.1.1. Могат  да се прилагат  и 
термоелектрически  измервателни  устройства  със съпоставима  
точност . 
Фигура  3
 
1.6.1.3.  Отчитане  с фотоклетка  
Апаратура  и процедура : 
Апаратът  се състои  от метална  камера  с автоматична  
нагревателна  система . Три капилярки  се напълват , както  е 
описано  в 1.6.1.1, и се поставят  в пещта . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 12
 
Може  да се направят  няколко  линейни  покачвания  на 
температурата  за калибриране  на апарата  и подходящото  
температурно  покачване  се нагласява  електрически  на 
предварително  подбрана  постоянна  линейна  скорост . 
Записващите  устройства  показват  действителната  температура  
на пещта  и температурата  на веществото  в капилярката . 
1.6.2.  Горещи  подложки  
1.6.2.1.  Кофлер  с гореща  пръчка  
Вж. допълнението . 
1.6.2.2.  Топилен  микроскоп  
Вж. допълнението . 
1.6.2.3.  Менискусен  метод  (полиамиди ) 
Вж. допълнението . 
Скоростта  на нагряване  при температурата  на топене  трябва  да е 
по-ниска  от 1 K/min.  
1.6.3.  Методи  за определяне  на температурата  на замръзване  
Вж. допълнението . 
1.6.4.  Термичен  анализ  
1.6.4.1.  Диференциален  термичен  анализ  
Вж. допълнението . 
1.6.4.2.  Диференциална  сканираща  калориметрия  
Вж. допълнението . 
1.6.5.  Определяне  на точката  на застиване  
Вж. допълнението . 
2. ДАННИ  
В някои  случаи  е необходима  корекция  на термометъра . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
По възможност  протоколът  от изпитването  трябва  да включва  
следната  информация : 
— използван  метод , 
— точна  спецификация  на веществото  (вид и примеси ) и 
предварителни  стъпки  на пречистване , ако има такива , 
— оценка  на точността . 
Като  температура  на топене  се съобщава  средноаритметичното  
от най-малко  две измервания , които  са в обхвата  на оценката  на 
точността  (вж. таблиците ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 13
 
Ако разликата  в температурите  на началната  и крайната  фаза  на 
топенето  е в границите  на точността  на метода , температурата  в 
крайната  фаза  на топенето  се приема  за температура  на топене  
на веществото ; в другия  случай  трябва  да се съобщят  и двете  
температури . 
Ако веществото  се разлага  или сублимира , преди  да се достигне  
температурата  на топене , трябва  да бъде  указана  температурата , 
при която  се наблюдава  този ефект . 
Всяка  информация  и бележки , свързани  с интерпретацията  на 
резултатите , трябва  да се отразят  в протокола , особено  онези , 
които  се отнасят  до примесите  и физичното  състояние  на 
веществото . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ОИCP, Paris, 1981, Test Guideline 102, решение  на Съвета  
C(81) 30 окончателен . 
(2) IUPAC, B. Le Neidre, B. Vodar, eds. Experimental thermody ­
namics. Butterworths, London 1975, vol. II, 803—834.  
(3) R. Weissberger ed.: Technique of organic Chemistry, Physical 
Methods of Organic Chemistry, 3rd ed., Interscience Publ., New 
York, 1959, vol. I, Part I, Chapter VII.  
(4) IUPAC, Physicochemical measurements: Catalogue of reference 
materials from national laboratories, Pure and applied chemistry, 1976, vol. 48, 505-515.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 14
 
Допълнение  
За допълнителни  технически  детайли  може  да се направи  справка  
например  със следните  стандарти . 
1. Капилярни  методи  
1.1. Приспособления  за измерване  на температурата  на топене  в 
течна  баня  
ASTM E 324-69 Standard test method for relative initial 
and final melting points and the 
melting range of organic chemicals 
(Стандартен  метод  за изпитване  на 
относителната  начална  и крайна  
точка  на топене  и областите  на 
топене  на органични  химикали ) 
ВS 4634 Method for the determination of 
melting point and/or melting range (Метод  за определяне  на точка  на 
топене  и/или интервал  на топене ) 
DIN 53181 Bestimmung des Schmelzintervalles 
von Harzen nach Kapilarverfahren 
(Определяне  на интервала  на
 
топене  на смоли  по капилярен  
метод ) 
JIS K 00-64 Testing methods for melting point of 
chemical products ( Методи  за 
изпитване  на точката  на топене  на 
химически  продукти ) 
1.2. Приспособления  за измерване  на температурата  на топене  в 
метален  блок  
DIN 53736 Visuelle Bestimmung der Schmelztem ­
peratur von teilkristallinen 
Kunststoffen ( Визуално  определяне  
на температурата  на топене  на част­  
ичнокристални  пластмаси ) 
ISO 1218 (E) Plastics — Polyamides — Determi ­
nation of „melting point“ ( Пластмаси  
— полиамиди  — определяне  на 
„точка  на топене “) 
2. Нагорещени  подложки  
2.1. Гореща  пръчка  на Кофлер  
ANSI/ASTM D 3451-76 Standard recommended practices for 
testing polymeric powder coatings (Стандартни  препоръчителни  
практики  за изпитване  на 
полимерни  прахообразни  покрития )
 
2.2. Микроскоп  за точка  на топене  
DIN 53736 Visuelle Bestimmung der Schmelztem ­
peratur von teilkristallinen Kunststoffen ( Визуално  определяне  
на температурата  на топене  на част­  
ичнокристални  пластмаси )
 
2.3. Менискусен  метод  (полиамиди ) 
ISO 1218 (E) Plastics — Polyamides — Determi ­
nation of „melting point“ ( Пластмаси  
— полиамиди  — определяне  на 
„точка  на топене “) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 15
 
ANSI/ASTM D 2133-66 Standard specification for acetal resin 
injection moulding and extrusion 
materials ( Стандартни  
характеристики  на материали  за 
шприцоване  под налягане  и 
екструдиране  на основата  на 
ацетални  смоли ) 
NF T 51-050 Resines de polyamides. Determination 
du „point de fusion“. Methode du 
menisque ( Полиамидни  смоли . 
Определяне  на „точка  на топене “. 
Менискусен  метод ) 
3. Методи  за определяне  на температурата  на замръзване  
ВS 4633 Method for the determination of crys ­
tallizing point ( Метод  за определяне  
на точката  на кристализация ) 
ВS 4695 Method for Determination of Melting 
Point of petroleum wax (Cooling Curve) ( Метод  за определяне  на 
точката  на топене  на нефтен  
парафин  (крива  на охлаждане ) 
DIN 51421 Bestimmung des Gefrierpunktes von 
Flugkraftstoffen, Ottokraftstoffen und 
Motorenbenzolen ( Определяне  на 
точката  на замръзване  на 
авиационни  бензини , автомобилни  
бензини  и моторни  бензоли ) 
ISO 2207 Cires de petrole: determination de la 
temperature de figeage ( Нефтен  
восък : определяне  
на точката  на 
замръзване ) 
DIN 53175 Bestimmung des Erstarrungspunktes 
von Fettsäuren ( Определяне  на 
точката  на застиване  на мастни  
киселини ) 
NF T 60-114 Point de fusion des paraffines ( Точка  
на топене  на парафини ) 
NF T 20-051 Methode de determination du point de 
cristallisation (point de congelation) 
(Метод  за определяне  на точката  на 
кристализация  (точката  на 
замръзване )) 
ISO 1392 Method for the determination of the 
freezing point ( Метод  за определяне  
на точката  на замръзване ) 
4. Термичен  анализ  
4.1. Диференциален  термичен  анализ  
ASTM E 537-76 Standard method for assessing the 
thermal stability of chemicals by 
methods of differential thermal 
analysis ( Стандартен  метод  за 
оценка  на термичната  устойчивост  
на химикали  чрез методите  на 
диференциалния  термичен  анализ ) 
ASTM E 473-85 Standard definitions of terms relating 
to thermal analysis ( Стандартни  
определения  на термините , 
отнасящи  се до термичния  анализ ) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 16
 
ASTM 472-86 Standard practice for reporting ther ­
moanalytical data ( Стандартна  
практика  за докладване  на данни  от 
термичния  анализ ) 
DIN 51005 Thermische Analyse, Begriffe 
(Термичен  анализ . Основни  
понятия ) 
4.2. Диференциална  сканираща  калориметрия  
ASTM E 537-76 Standard method for assessing the 
thermal stability of chemicals by methods of differential thermal 
analysis ( Стандартен  метод  за 
оценка  на термичната  устойчивост  
на химикали  чрез методите  на 
диференциалния  термичен  анализ ) 
ASTM E 473-85 Standard definitions of terms relating 
to thermal analysis ( Стандартни  
определения  на термините , 
отнасящи  се до термичния  анализ ) 
ASTM 472-86 Standard practice for reporting ther ­
moanalytical data ( Стандартна  
практика  за докладване  на данни  от 
термичния  анализ ) 
DIN 51005 Thermische Analyse, Begriffe 
(Термичен  анализ . Основни  
понятия )
 
5. Определяне  на точката  на застиване  
NBN 52014 Echantillonnage et analyse des 
produits du pétrole: Point de trouble 
et point d'écoulement limite — Monstememing en ontleding van aardolieproducten: Troebelingspunt en 
vloeipunt 
ASTM D 97-66 Standard test method for pour point of 
petroleum oils ( Стандартен  метод  за 
определяне  на точката  на застиване  
на нефтени  масла ) 
ISO 3016 Petroleum oils — Determination of 
pour point. ( Нефтени  масла  — 
определяне  на точката  на застиване )
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 17
 
А.2. ТЕМПЕРАТУРА  НА КИПЕНЕ  
1. МЕТОД  
Повечето  от описаните  методи  се основават  на Ръководството  за 
провеждане  на изпитвания  на ОИСР  (1). Основните  принципи  са 
дадени  в препратки  (2) и (3). 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Описаните  тук методи  и апаратури  могат  да се прилагат  за 
течности  и нискотопими  вещества , ако те не претърпяват  
химична  реакция , преди  да се достигне  температурата  им на 
кипене  (например  автоокисление , прегрупировка , разграждане  
и др.). Методите  могат  да се прилагат  за чисти  и за непреч­  
истени  течни  вещества . 
Акцентира  се на методите , които  използват  отчитане  с 
фотоклетка  и термичен  анализ , защото  те позволяват  да се 
определят  както  температурата  на кипене , така и температурата  
на топене . Нещо  повече , измерванията  може  да се извършват  
автоматично . 
„Динамичният  метод “ има това предимство , че може  да се 
използва  и за определяне  на парното  налягане , а и не е необ­  
ходимо  температурата  на кипене  да се коригира  към нормално  
налягане  (101,325 k Ра), защото  то може  да се задава  по време  на 
измерването  с маностат . 
Забележки : 
Влиянието , което  примесите  оказват  върху  определянето  на 
температурата  на кипене , зависи  в голяма  степен  от природата  
на тези примеси . Когато  в пробата  има летливи  примеси , които  
могат  да повлияят  на резултатите , веществото  може  да се 
пречисти . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Нормалната  температура  на кипене  е температурата , при която  
налягането  на наситените  пари  над течността  е 101,325 k Ра. 
Ако температурата  на кипене  не се измерва  при нормално  
атмосферно  налягане , зависимостта  на парното  налягане  от 
температурата  може  да се опише  с уравнението  на Клаузиус - 
Клапейрон : 
log p ¼ Δ H v 
2; 3 RT þ const : 
където : 
р = парното  налягане  на веществото  в паскали  
ΔН V = неговата  топлина  на изпарение  в J mol  -1 
R = универсалната  моларна  газова  константа  
= 8,314 J mol  -1 K -1 
Т = термодинамичната  температура  в K 
Температурата  на кипене  се определя  спрямо  външното  
налягане  по време  на измерването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 18
 
Превръщане  на мерните  единици  
Налягане  (единици : kРа) 
100 kPa = 1 bar = 0,1 MPa 
(„bar“ все още е разрешена  единица , но не се 
препоръчва ) 
133 Pa = 1 mm Hg = 1 Тоrr 
(единиците  „mm Hg“ и „Тоrr“ не са позволени ) 
1 atm = стандартна  атмосфера  = 101 325 Ра 
(единицата  „atm“ не е позволена ) 
Температура  (единици : K) 
t = T – 273,15  
t: Целзиева  температура , градус  Целзий  ( o С) 
Т: термодинамична  температура , Келвин  (K) 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не във всички  случаи , когато  се изследва  ново  вещество , е 
необходимо  да се използват  вещества  за сравнение . Преди  
всичко  те трябва  да служат  за периодична  проверка  на 
действието  на метода , а също  и да позволяват  да се прави  
сравнение  с резултатите , получени  по други  методи . 
Някои  калибровъчни  вещества  могат  да бъдат  намерени  в 
методите , изброени  в допълнението . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Пет от методите  за определяне  на температурата  на кипене  
(интервала  на кипене ) се основават  на измерване  на 
температурата  на кипене , останалите  два метода  се основават  
на термичен  анализ . 
1.4.1.  Определяне  с помощта  на ебулиометър  
Поначало  ебулиометрите  са предназначени  за определяне  на 
молекулното  тегло  по нарастването  на температурата  на 
кипене , но те също  са подходящи  и за точни  измервания  на 
самата  температура  на кипене . Един  съвсем  просто  устроен  
апарат  е описан  в ASTM D 1120-72 ( вж. допълнението ). В 
този апарат  течността  се нагрява  в равновесни  условия  при 
атмосферно  налягане , докато  започне  да кипи . 
1.4.2.  Динамичен  метод  
Този  метод  включва  измерване  на температурата  на повторна  
кондензация  на парите  с помощта  на подходящ  термометър  в 
обратния  хладник  по време  на кипенето . При този метод  може  
да се изменя  налягането . 
1.4.3.  Дестилационен  метод  за температура  на кипене  
Този  метод  включва  дестилация  на течността , измерване  на 
температурата  на повторна  кондензация  на парите  и определяне  
на количеството  на дестилата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 19
 
1.4.4.  Метод  по Сиволобоф  (Siwoloboff)  
Пробата  се нагрява  в епруветка , поставена  в течността  на 
нагревателна  баня . В епруветката  с пробата  е потопена  
запоена  капилярка , която  съдържа  въздушно  мехурче  в 
долната  си част. 
1.4.5.  Отчитане  с фотоклетка  
По принципа  на Сиволобоф  се провежда  автоматично  фотоел­  
ектрично  измерване , като се използва  увеличаващият  се брой  
мехурчета . 
1.4.6.  Диференциален  термичен  анализ  
При тази техника  се прави  запис  на разликата  в температурите  
на веществото  и на сравнителния  материал  като функция  от 
температурата , докато  веществото  и сравнителният  материал  са 
подложени  на една  и съща  контролирана  температурна  
програма . Когато  пробата  претърпява  преход , свързан  с 
промяна  на енталпията , тази промяна  се отбелязва  като 
ендотермично  отклонение  (кипене ) от основната  линия  на 
записа  на температурата . 
1.4.7.  Диференциална  сканираща  калориметрия  
При тази техника  се прави  запис  на разликата  в подадените  
енергии  към веществото  и към сравнителния  материал  като 
функция  от температурата , докато  веществото  и сравнителният  
материал  са подложени  на една  и съща  контролирана  
температурна  програма . Тази  енергия  представлява  енергията , 
необходима  да се установи  нулева  температурна  разлика  
между  изследваното  вещество  и сравнителния  материал . 
Когато  пробата  претърпява  преход , свързан  с промяна  на 
енталпията , тази промяна  се отбелязва  чрез ендотермично  
отклонение  (кипене ) от основната  линия  на записа  на 
топлинния  поток . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Приложимостта  и точността  на различните  методи  за 
определяне  на температурата  на кипене /интервала  на кипене  са 
дадени  в таблица  1. 
Таблица  1 
Сравнение  на методите  
Метод  на изпитване  Оценка  на точността  Съществуващ  стандарт  
Ебулиометър  ± 1,4 K ( до 373 K) (  1 ) ( 2 ) 
± 2,5 K ( до 600 K) (  1 ) ( 2 ) ASTM D 1120-72 (  1 ) 
Динамичен  метод  ± 0,5 K ( до 600 K) (  2 ) 
Дестилационен  процес  (област  на 
кипене ) ± 0,5 K ( до 600 K) ISO/R 918, DIN 53171, BS 
4591/71 
По Сиволобоф  ± 2 K ( до 600 K) (  2 ) 
Отчитане  с фотоклетка  ± 0,3 K ( при 373 K) (  2 ) 
Диференциална  термична  
калориметрия  ± 0,5 K ( до 600 K) 
± 2,0 K ( до 1 273 K) ASTM E 537-76 
Диференциална  сканираща  
калориметрия  ± 0,5 K ( до 600 K) 
± 2,0 K ( до 1 273 K) ASTM Е 537-76  
( 1 ) Тази  точност  е валидна  само  за опростен  апарат , като например  описания  в ASTM D 1120-72; тя може  да се 
подобри  с по-усъвършенствани  ебулиометрични  прибори . 
( 2 ) Валидна  само  за чисти  вещества . Използването  при други  условия  трябва  да се оправдае . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 20
 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДИТЕ  
Начините  на работа  при някои  от методите  са описани  в 
международни  и национални  стандарти  (вж. допълнението ). 
1.6.1.  Ебулиометър  
Вж. допълнението  
1.6.2.  Динамичен  метод  
Вж. метод  А.4 за определяне  на парното  налягане . 
Записва  се температурата  на кипене , която  се наблюдава  при 
приложено  налягане  от 101,325 k Ра. 
1.6.3.  Дестилационен  процес  (интервал  на кипене ) 
Вж. допълнението  
1.6.4.  Метод  по Сиволобоф  
Пробата  се нагрява  в апаратурата  за определяне  на температура  
на топене  в епруветка  с диаметър  приблизително  5 mm (фигура  1). 
На фигура  1 е показан  един  тип стандартизиран  апарат  за 
температури  на топене  и кипене  (JIS K 0064) ( направен  от 
стъкло ; всички  размери  са в милиметри ). 
Фигура  1
 
В тръбата  за пробата  се поставя  капилярка  (кипяща  капилярка ), 
запоена  на разстояние  около  1 cm над долния  край . Нивото , до 
което  се запълва  с изследваното  вещество , е такова , че запоената  
част на капилярката  да се намира  под повърхността  на 
течността . Тръбата  с пробата , съдържаща  кипящата  капилярка , 
се закрепва  или към термометъра  с гумена  лента , или се 
фиксира  с подпора  отстрани  (вж. фигура  2). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 21
 
Фигура  2 
Принцип  по Сиволобоф  Фигура  3 
Модифициран  принцип
  
Течността  за банята  се избира  според  температурата  на кипене . 
При температури  до 573 K може  да се използва  силиконово  масло . 
Течен  парафин  може  да се използва  само  до 473 K. Отначало  
нагряването  на течността  в банята  трябва  да се нагласи  така, че 
скоростта  на повишаване  на температурата  да е 3 K/min. Течността  
на банята  трябва  да се разбърква . При около  10 K под очакваната  
температура  на кипене  нагряването  се забавя , така че скоростта  на 
повишаване  на температурата  да не надвишава  1 K/min. C 
приближаването  до температурата  на кипене  от кипящата  
капилярка  бързо  започват  да се появяват  мехурчета . 
Температурата  на кипене  е тази температура , когато  при 
моментно  охлаждане  веригата  от мехурчета  се прекъсва  и 
течността  в капилярката  започва  внезапно  да се покачва . Пока­  
занието  на термометъра  в този момент  представлява  
температурата  на кипене  на веществото . 
При модифицирания  принцип  (фигура  3) температурата  на кипене  се 
определя  в капилярка  за температура  на топене . Капилярката  се 
изтегля  на дължина  около  2 cm в единия  край , така че да образува  
остър  връх  (а), и се засмуква  малко  количество  от пробата . 
Отвореният  край  на изтънената  капилярка  се затваря  чрез 
стопяване  така, че в края да се разположи  малко  въздушно  
мехурче . При нагряването  в апарата  за температура  на топене  (b) 
въздушното  мехурче  се разширява . Температурата  на кипене  съотв­  
етства  на температурата , при която  тапата , образувана  от веществото  
над въздуха , достигне  до нивото  на течността  на банята  (с). 
1.6.5.  Отчитане  с фотоклетка  
Пробата  се нагрява  в капилярка  във вътрешността  на нагрят  
метален  блок . 
През  подходящ  отвор  в блока  се насочва  светлинен  лъч, който  
преминава  през веществото  и попада  върху  прецизно  
калибрирана  фотоклетка . 
В процеса  на повишаване  на температурата  на пробата  от кипящата  
капилярка  се появяват  единични  въздушни  мехурчета . Когато  се 
достигне  температурата  на кипене , броят  на мехурчетата  нараства  
много . Това  води  до промяна  в интензитета  на светлината , 
регистрирана  от фотоклетката , и изпраща  сигнал  за застопоряване  
на показанието  на индикатора , който  отчита  температурата  на 
платинов  съпротивителен  термометър , разположен  в блока . 
Този  метод  е особено  подходящ , защото  позволява  измервания  
при температури  под стайната  до 253,15 K (- 20  o С), без да се 
налагат  промени  в апарата . Приборът  просто  трябва  да се 
постави  в охлаждаща  баня . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 22
 
1.6.6.  Термичен  анализ  
1.6.6.1.  Диференциален  термичен  анализ  
Вж. допълнението . 
1.6.6.2.  Диференциална  сканираща  калориметрия  
Вж. допълнението . 
2. ДАННИ  
При малки  отклонения  от нормалното  налягане  (максимум  ± 5 
kРа), температурите  на кипене  се нормализират  към Т n с 
числовото  уравнение  на Сидни  Юнг : 
T n = T + (f  T × Δp) 
където : 
Δp = (101,325 - p) [ отбележи  знака ] 
р = измереното  налягане  в kРа 
f T = скоростта  на промяна  на температурата  на кипене  с 
налягането  в K/kРа 
Т = измерената  температура  на кипене  в K 
Т n = температурата  на кипене , коригирана  към нормално  
налягане  в K 
Коефициентите  на температурната  корекция , f T и уравненията  за 
тяхното  приблизително  определяне  за много  вещества  са 
включени  в споменатите  по-горе международни  и национални  
стандарти . 
Например  методът  в DIN 53171 дава следните  груби  корекции  
за разтворители , включени  в бои: 
Таблица  2 
Коефициенти  за температурна  корекция  f T 
Температура  Т (K) Корекционен  коефициент  f T 
(K/kРа) 
323,15 0,26 
348,15 0,28 
373,15 0,31 
398,15 0,33 423,15 0,35 
448,15 0,37 
473,15 0,39 498,15 0,41 523,15 0,44 
548,15 0,45 
573,15 0,47
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 23
 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
По възможност  при отчитане  на резултатите  от изпитването  
трябва  да се включи  следната  информация : 
— използван  метод , 
— точна  спецификация  на веществото  (вид и примеси ) и 
предварителни  етапи  на пречистване , ако има такива , 
— оценка  на точността . 
Като  температура  на кипене  се съобщава  средноаритметичното  
от най-малко  две измервания , които  са в границите  на оценката  
на точността  (вж. таблица  1). 
Трябва  да се укажат  както  измерените  температури  на кипене  и 
тяхната  средна  стойност , така и налягането (ията) в kРа, при 
което (ито) са проведени  измерванията . За предпочитане  е 
наляганията  да са близки  до нормалното  атмосферно  налягане . 
Цялата  информация  и бележките  относно  интерпретацията  на 
резултатите  трябва  да се докладват  и особено  онези , които  са 
свързани  с примесите  и физичното  състояние  на веществото . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ОИСР , Paris, 1981, Test guideline 103, решение  на Съвета  
C(81) 30 окончателен . 
(2) IUPAC, B. Le Neidre, B. Vodar, editions. Experimental ther ­
modynamics, Burretworths, London, 1975, vol. II.  
(3) R. Weissberger edition: Technique of organic chemistry, 
Physical methods of organic chemistry, Third Edition, 
Interscience Publications, New York, 1959, vol. I, Part I, Chapter VIII.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 24
 
Допълнение  
За допълнителни  технически  детайли  може  да се направи  справка  
например  със следните  стандарти : 
1. Ебулиометър  
1.1. Уреди  за измерване  на температурата  на кипене  с течна  баня  
ASTM D 1120-72 Standard test method for boiling point of 
engine anti-freezes ( Стандартен  метод  за 
определяне  на температурата  на кипене  
на антифриз  за двигатели ) 
2. Дестилационен  процес  (интервал  на кипене ) 
ISO/R 918 Test Method for Distillation (Distillation 
Yield and Distillation Range) Метод  за 
изпитване  на дестилацията  (дест­  
илационен  добив  и дестилационен  
обхват ) 
ВS 4349/68 Method for determination of distillation of 
petroleum products ( Метод  за 
определяне  на дестилацията  на 
нефтени  продукти ) 
BS 4591/71 Method for the determination of distil ­
lation characteristics ( Метод  за 
определяне  на дестилационни  
характеристики ) 
DIN 53171 Lösungsmittel für Anstrichstoffe, 
Bestimmung des Siedeverlaufes ( Разт­  
ворители  за лакобояджийски  
материали , определяне  хода  на дест­  
илацията ) 
NF T 20-608 Distillation: determination du rendement 
et de l'intervalle de distillation ( Дест­  
илация : определяне  на добива  и на 
дестилационния  интервал ) 
3. Диференциален  термичен  анализ  и диференциална  
сканираща  калориметрия  
ASTM E 537-76 Standard method for assessing the thermal 
stability of chemicals by methods of diffe ­
rential thermal analysis ( Стандартен  
метод  за оценка  на термичната  усто­  
йчивост  на химикали  чрез методите  
на диференциалния  термичен  анализ ) 
ASTM E 473-85 Standard definitions of terms relating to 
thermal analysis ( Стандартни  
определения  на термините , отнасящи  
се до термичния  анализ ) 
ASTM E 472-86 Standard practice for reporting thermoana ­
lytical data ( Стандартна  практика  за 
докладване  на данни  от термичен  
анализ ) 
DIN 51005 Thermische Analyse: Begriffe ( Термичен  
анализ : основни  понятия ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 25
 
А.З. ОТНОСИТЕЛНА  ПЛЪТНОСТ  
1. МЕТОД  
Описаните  методи  се основават  на Ръководството  за провеждане  
на изпитвания  на ОИСР  (1). Основните  принципи  са дадени  в 
препратка  (2). 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Описаните  методи  за определяне  на относителната  плътност  са 
приложими  за твърди  и течни  вещества  без всякакво  
ограничение  с оглед  на тяхната  степен  на чистота . Различните  
методи , които  могат  да се използват , са дадени  в таблица  1. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Относителната  плътност  D 4 20 на твърди  вещества  и течности  
представлява  съотношението  между  масата  на даден  обем  от 
веществото , което  ще се изследва , определена  при 20  o С, и 
масата  на същия  обем  вода , определена  при 4 o С. Относителната  
плътност  е безразмерна  величина . 
Плътността  на едно  вещество  „р“ е частното  на масата  „m“ и 
обема  „v“.  
В системата  SI плътността  „р“ се изразява  в kg/m  3 . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  (1) (3)  
Не е необходимо  да се използват  вещества  за сравнение  във 
всички  случаи , когато  се изследва  ново  вещество . Преди  
всичко  те трябва  да служат  за периодична  проверка  на 
действието  на метода  и да позволяват  да се правят  сравнения  
с резултатите , получени  по други  методи . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДИТЕ  
Използват  се четири  класа  методи . 
1.4.1.  Методи , основани  на силата  на изтласкване  
1.4.1.1.  Ареометър  (за течни  вещества ) 
Достатъчно  точни  и бързи  измервания  на плътността  могат  да се 
получат  с плаващи  ареометри , които  позволяват  плътността  на 
дадена  течност  да се изчисли  от дълбочината  на потапяне  по 
показанията  на градуирана  скала . 
1.4.1.2.  Хидростатична  везна  (за течни  и твърди  вещества ) 
За определяне  на плътността  може  да се използва  разликата  в 
теглата  на изследваната  проба , измерени  във въздуха  и в 
подходяща  течност  (например  вода ). 
За твърди  вещества  измерената  плътност  е представителна  само  
за конкретната  проба , с която  е извършено  измерването . За 
определяне  на плътността  на течности  тяло  с известен  обем  
„v“ се претегля  отначало  на въздуха  и след  това в течността . 
1.4.1.3.  Метод  с потопено  тяло  (за течни  вещества ) (4)  
При този метод  плътността  на дадена  течност  се определя  от 
разликата  в резултатите , получени  при претеглянето  на 
течността  преди  и след  потапянето  на тяло  с известен  обем  в 
нея. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 26
 
1.4.2.  Пикнометрични  методи  
За твърди  вещества  или течности  могат  да се използват  
пикнометри  с различни  форми  и с известни  обеми . Плътността  
се изчислява  от разликата  в теглата  на празния  и пълния  
пикнометър  и неговия  известен  обем . 
1.4.3.  Пикнометри  с въздушно  сравняване  (за твърди  вещества ) 
Плътността  на дадено  твърдо  вещество  с произволна  форма  
може  да се измери  при стайна  температура  с помощта  на 
пикнометър  с въздушно  сравняване . Обемът  на веществото  се 
измерва  на въздуха  или в инертен  газ в цилиндър  с променлив  
калибриран  обем . За да се изчисли  плътността , след  като 
приключи  измерването  на обема  се прави  едно  измерване  и на 
масата . 
1.4.4.  Осцилиращ  денситометър  (5) (6) (7)  
Плътността  на дадена  течност  може  да се измери  с осцилиращ  
денситометър . Механичен  осцилатор , конструиран  под формата  
на U-образна  тръба , се привежда  в трептене  при резонансната  
честота  на осцилатора , която  зависи  от масата  му. Въвеждането  
на проба  променя  резонансната  честота  на осцилатора . Апаратът  
трябва  да се калибрира  с помощта  на две течности  с известни  
плътности . Препоръчително  е тези течни  вещества  да се 
подберат  така, че плътностите  им да покриват  обхвата , в 
който  ще се извършва  измерването . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Приложимостта  на различните  методи , които  се използват  за 
определяне  на относителната  плътност , е показана  в таблицата . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДИТЕ  
В допълнението  са дадени  като примери  стандарти , в които  
може  да се направи  справка  за допълнителни  технически  
подробности . 
Изпитванията  трябва  да се извършват  при 20 o С, като се правят  
поне  по две измервания . 
2. ДАННИ  
Вж. стандартите . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
По възможност  протоколът  от изпитванията  трябва  да включва  
следната  информация : 
— използван  метод , 
— точна  спецификация  на веществото  (вид и примеси ) и 
предварителни  етапи  на пречистване , ако има такива . 
Относителната  плътност  D 20 
4 трябва  да се съобщава  по начина , 
определен  в 1.2, заедно  с физичното  състояние  на измерваните  
вещества . 
Цялата  информация  и бележките  относно  интерпретацията  на 
резултатите  трябва  да се включат  в протокола , особено  онези , 
които  са свързани  с примесите  и физичното  състояние  на 
веществото . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 27
 
Таблица  
Приложимост  на методите  
Метод  на измерване  Плътност  Максимален  
възможен  
динамичен  
вискозитет  Съществуващи  
стандарти  твърди  
вещества  течности  
1.4.1.1. Хидрометър  да 5 Pa s ISO 387, 
ISO 649-2, 
NF T 20-050 
1.4.1.2. Хидростатична  везна  
а) твърди  вещества  да ISO 1183 (A) 
б) течности  да 5 Pa s ISO 901 и 758 
1.4.1.3. Метод  с потопено  тяло  да 20 Pa s DIN 53217 
1.4.2. Пикнометър  ISO 3507 
а) твърди  вещества  да ISO 1183 (B) 
NF T 20-053 
б) течности  да 500 Ра s ISO 758 
1.4.3. Пикнометър  с въздушно  
сравняване  да DIN 55990 Teil 3, 
DIN 53243 
1.4.4. Осцилиращ  денсит­  
ометър  да 5 Pa s  
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ОИСР , Paris, 1981, Test Guideline 103, решение  на Съвета  
C(81) 30 окончателен . 
(2) R. Weissberger ed., Technique of Organic Chemistry, Physical 
Methods of Organic Chemistry, 3  rd ed., Chapter IV, Interscience 
Publ. New York, 1959, vol. I, Part 1.  
(3) IUPAC, Recommended reference materials for realization of 
physico-chemical properties, Pure and Applied Chemistry, 1976, vol. 48, 508.
 
(4) Wagenbreth, H., Die Tauchkugel zur Bestimmung der Dichte 
von Fluessigkeiten, Technisches Messen tm, 1979, vol. 11, 
427—430.  
(5) Leopold, H., Die digitale Messung von Fluessigkeiten, Elek ­
tronik, 1970, vol. 19, 297—302.  
(6) Baumgarten, D., Fullmengenkontrolle bei vorgepackten Erzeug ­
nissen — Verfahren zur Dichtebestimmung bei fluessigen 
Produkten und ihre praktische Anwendung, Die Pharmazeu ­
tische Industrie, 1975, vol. 37, 717-726.  
(7) Riemann, J., Der Einsatz der digitalen Dichtemessung im 
Brauerwissenschaft, 1976, vol. 9, 253—255.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 28
 
Допълнение  
За допълнителни  технически  детайли  може  да се направи  справка  
например  със следните  стандарти : 
1. Методи  със сила  на изтласкване  
1.1. Ареометър  
DIN 12790, ISO 387 Hydrometer; general instructions 
(Ареометър ; основни  инструкции ); 
DIN 12791 Part I: Density hydrometers; construction, 
adjustment and use ( Част  I: Ареометри  
за плътност : конструкция , настройка  и 
употреба ); 
Part II: Density hydrometers; standardized 
sizes, designation ( Част  II: Ареометри  за 
плътност ; стандартизирани  размери , 
обозначаване ); 
Part III: Use and test ( Част  III: Употреба  
и методи  за изпитване ). 
ISO 649-2 Laboratory glassware: Density hydro ­
meters for general purpose ( Лабораторна  
стъклария : ареометри  с общо  
предназначение ); 
NF T 20-050 Chemical products for industrial use — 
Determination of density of liquids — Areometric method ( Химични  продукти  
за индустриална  употреба  — 
определяне  плътността  на течности  — 
ареометричен  метод ); 
DIN 12793 Laboratory glassware: range find hydro ­
meters (
Лабораторна  стъклария : 
широкообхватни  хидрометри ); 
1.2. Хидростатична  везна  
За твърди  вещества  
ISO 1183 Method A: Methods for determining the 
density and relative density of рlastics 
excluding cellular plastics ( Метод  А: 
Методи  за определяне  на плътността  
и относителната  плътност  на 
пластмаси  с изключение  на пенопл­  
астмаси ); 
NF T 20-049 Chemical products for industrial use — 
Determination of the density of solids other than powders and cellular products — Hydrostatic balance method ( Химични  
продукти  за индустриална  употреба . 
Определяне  плътността  на твърди  
вещества  с изключение  на прахо­  
образни  и разпенени  продукти  — 
метод  с хидростатична  везна ); 
ASTM-D-792 Specific gravity and density of plastics by 
displacement ( Относително  тегло  и 
плътност
 на пластмаси  чрез 
изместване ); 
DIN 53479 Testing of plastics and elastomers; deter ­
mination of density ( Изследване  на 
пластмаси  и еластомери ; определяне  
на плътността ); 
За течни  вещества  
ISO 901 ISO 758  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 29
 
DIN 51757 Testing of mineral oils and related mate ­
rials; determination of density ( Изпитване  
на минерални  масла  и свързани  с тях 
материали ; определяне  на плътността ); 
ASTM D 941-55, ASTM D 1296-67 и ASTM D 1481-62 
ASTM D 1298 Density, specific gravity or API gravity of 
crude petroleum and liquid petroleum products by hydrometer method (Плътност , специфично  тегло  или API 
относително  тегло  на суров  нефт  и 
течни  нефтени  продукти  чрез хидром­  
етричен  метод ); 
ВS 4714 Density, specific gravity or API gravity of 
crude petroleum and liquid petroleum products by hydrometer method (Плътност , специфично  тегло  или API 
относително  тегло  на суров  нефт  и 
течни  нефтени  продукти  чрез хидром­  
етричен
 метод ); 
1.3. Метод  с потопено  тяло  
DIN 53217 Testing of paints, varnishes and similar 
coating materials; determination of 
density; immersed body method ( Изп­  
итване  на бои, лакове  и подобни  
материали  за покрития ; определяне  на 
плътността ; метод  с потопено  тяло ) 
2. Пикнометрични  методи  
2.1. За течни  вещества  
ISO 3507 Pycnometers ( Пикнометри ); 
ISO 758 Liquid chemical products; determination 
of density at 20  o C (Течни  химични  
продукти ; определяне  на плътността  
при 20  o С); 
DIN 12797 Gay-Lussac pycnometer (for non-volatile 
liquids which are not too viscous) ( Пик­  
нометър  на Гей-Люсак  (за нелетливи  
течности , които  не са много  
вискозни )); 
DIN 12798 Lipkin pycnometer (for liquids with 
a kinematic viscosity of less than 100.10
 -6 m 2 s -1 at 15  o C) (Пикнометър  
на Липкин  (за течности  с кинематичен  
вискозитет , по-малък  от 100.10  -6 m 2 s -1 
при 15  o С)); 
DIN 12800 Sprengel pycnometer (for liquids as DIN 
12798) ( Пикнометър  на Шпренгел  (за 
течности  както  в DIN 12798)); 
DIN 12801 Reischauer pyenometer (for liquids 
with a kinematic viscosity of less than l00.10
 -6 m 2 s -1 at 20  o C, applicable in 
particular also to hydrocarbons and 
aqueous solutions as well as to liquids 
with higher vapour pressure, approxi ­
mately 1 bar at 90  o C) (Пикнометър  на 
Райшауер  (за течности  с кинематиченв­  
искозитет  по-малък  от 100.10  -6 m 2 s -1 
при 20  o С, приложим  по-специално  
също  и за въглеводороди  и водни  
разтвори , както  и за течности  с по- 
високо  налягане  на парите , приблиз­  
ително  100 kPa при 90  o С)); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 30
 
DIN 12806 Hubbard pycnometer (for viscous liquids 
of all types which do not have too high a 
vapour pressure, in particular also for paints, varnishes and bitumen) ( Пик­  
нометър  на Хубард  (за вискозни  
течности  от всички  типове , които  
нямат  много  високо  налягане  на 
парите , по-специално  също  и за бои, 
лакове  и битуми )); 
DIN 12807 Bingham pycnometer (for liquids, as in 
DIN 12801) ( Пикнометър  на Бингам  
(за течности  както  в DIN 12801)); 
DIN 12808 Jaulmes pycnometer (in particular for 
ethanol — water mixture) ( Пикнометър  
на Йолм  (по-специално  за смес  
етанол —вода )); 
DIN 12809 Pycnometer with ground-in thermometer 
and capillary side tube (for liquids 
which are not too viscous) ( Пикнометър  
с вграден
 термометър  и странична  
капилярна  тръбичка  (за течности , 
които  не са твърде  вискозни )); 
DIN 53217 Testing of paints, varnishes and similar 
products; determination of density by 
pycnometer ( Изпитване  на бои, лакове  
и подобни  продукти ; определяне  на 
плътността  чрез пикнометър ); 
DIN 51757 Point 7: Testing of mineral oils and 
related materials; determination of density ( Точка  7: Изследване  на 
минерални  масла  и свързаните  с тях 
продукти ; определяне  на плътността ); 
ASTM D 297 Section 15: Rubber products — chemical 
analysis ( Част  15: Каучукови  продукти  
— химичен  анализ ); 
ASTM D 2111 Method C: Halogenated organic 
compounds ( Метод  С: Халогенирани  
органични  съединения ); 
ВS 4699 Method for determination of specific 
gravity and density of petroleum 
products (graduated bicapillary pycnometer method) ( Метод  за 
определяне  на специфичното  тегло  и 
плътността  на нефтени  продукти  
(метод  с градуиран  двукапилярен  
пикнометър ); 
ВS 5903 Method for determination of relative 
density and density of petroleum products by the capillary — stoppered pycnometer method ( Метод  за 
определяне  на относителната  плътност  
и плътността  на нефтени  продукти  с 
капилярка  — метод  със запушен  
пикнометър ); 
NF Т 20-053 Chemical products for industrial use — 
Détermination of density of solids in powder and liquids — Pyknometric 
method ( Химични  продукти  за 
индустриална  употреба  — определяне  
на плътността  на 
твърди  вещества  в 
прахове  и течности  — пикнометричен  
метод ); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 31
 
2.2. За твърди  вещества  
ISO 1183 Method B: Methods for determining the 
density and relative density of plastics excluding cellular plastics ( Метод  В: 
Методи  за определяне  на плътността  
и относителната  плътност  на 
пластмаси  с изключение  на разпенени  
пластмаси ); 
NF Т 20-053 Chemical products for industrial use — 
Détermination of density of solids in 
powder and liquids — Pyknometric method ( Химични  продукти  за 
индустриална  употреба  — определяне  
на плътността  на твърди  вещества  в 
прахове  и течности  — пикнометричен  
метод ); 
DIN 19683 Determination of the density of soils 
(Определяне  на плътността  на почви )
 
3. Пикнометър  с въздушно  сравняване  
DIN 55990 Part 3: Prüfung von Anstrichstoffen und 
ähnlichen Beschichtungsstoffen; 
Pulverlack; Bestimmung der Dichte 
(Част  3: Изпитване  на лакове  и бои и 
подобни  материали  за покрития ; прахо­  
образен  лак; определяне  на плът­  
ността ); 
DIN 53243 Anstrichstoffe; Chlorhaltige Polymere; 
Prüfung ( Лакобояджийски  материали ; 
хлорсъдържащи  полимери ; изпитване ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 32
 
A.4. НАЛЯГАНЕ  НА ПАРИТЕ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на OECD TG 104 (2004).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  преразгледан  вариант  на метод  А.4 (1) включва  един  
допълнителен  метод ; ефузионен  метод : изотермична  
термогравиметрия , предназначена  за вещества  с много  ниски  
налягания  на парите  (до 10  –10 Pa). С оглед  на необходимостта  
от методика , по-специално  по отношение  на определянето  на 
налягането  на парите  при вещества  с ниско  налягане  на 
парите , се оценяват  още веднъж  други  методики  за този метод  
по отношение  на други  интервали  на приложимост . 
В условията  на термодинамично  равновесие  налягането  на 
парите  на чистото  вещество  зависи  само  от температурата . 
Основните  принципи  са описани  в (2) и (3). 
Единствена  методика  за измерване , приложима  за целия  обхват  
на налягания  на парите  от под 10  –10 до 10  5 Pa, не съществува . 
Този  метод  включва  осем  метода  за измерване  на налягането  на 
парите , които  могат  да се прилагат  в различни  обхвати  от парни  
налягания . В таблица  1 различните  методи  са сравнени  по 
отношение  на обхватите  на прилагането  им и измерването . 
Методите  могат  да бъдат  прилагани  за съединения , които  не 
се разлагат  при условията  на изследването . В случаите , в 
които  експерименталните  методи  не могат  да бъдат  приложени  
по технически  причини , налягането  на парите  може  да бъде  
оценено , като препоръчителният  метод  за оценка  е даден  в 
допълнението . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Налягане  на парите  на вещество  е налягането  на наситените  
пари  над твърдо  или течно  вещество . 
Трябва  да се използва  единицата  за налягане  по SI, която  е 
паскал  (Ра). По-долу  са дадени  други  мерни  единици , които  са 
използвани  в миналото , заедно  с техните  коефициенти  на 
преобразуване : 
1 Torr = 1 mm Hg = 1,333 × 10  2 Pa 
1 атмосфера  = 1,013 × 10  5 Pa 
1 bar = 10  5 Pa 
Eдиницата  за температура  по SI е Келвин  (K). Преобразуването  
на градуси  по Целзий  в келвини  се извършва  по формулата . 
T = t + 273,15  
където  Т е келвиновата  температура  или абсолютната  
температура  в келвини , а t е температурата , изразена  в градуси  
по Целзий . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 33
 
Таблица  1 
Метод  на измерване  Вещества  Оценка  
повторяемост  Оценка  
възпроиз­  
водимост  Препоръчителен  
обхват  твърди  течни  
Динамичен  метод  Нискотопи­  
ми Да до 25 % 
от 1 до 5 % до 25 % 
от 1 до 5 % от 10 3 Pa 
до 2 × 10  3 Pa 
от 2 × 10  3 Pa 
до 10 5 Pa 
Статичен  метод  Да Да от 5 до 10 % от 5 до 10 % от 10 Pa 
до 10 5 Pa 
от 10 –2 Pa 
до 10 5 Pa (  1 ) 
Метод  на изотен­  
ископа  Да Да от 5 до 10 % от 5 до 10 % от 10 2 Pa 
до 10 5 Pa 
Ефузионен  метод : 
везна  за 
измерване  на 
налягането  на 
парите  Да Да от 5 до 20 % до 50 % от 10 –3 до 1 Pa 
Ефузионен  метод : 
Кнудсенова  
клетка  Да Да от 10 
до 30 % — от 10 –10 до 1 P 
Ефузионен  метод : 
изотермична  
термогравиметрия  Да Да от 5 до 30 % до 50 % от 10 –10 до 1 Pa 
Метод  с насищане  
на газ Да Да от 10 
до 30 % до 50 % от 10 –10 
до 10 3 Pa 
Метод  с въртящ  
се ротор  Да Да от 10 
до 20 % — от 10 –4 до 0,5 Pa  
( 1 ) При използване  на капацитивен  манометър . 
1.3. ПРИНЦИП  НА ИЗСЛЕДВАНЕТО  
В общия  случай  налягането  на парите  се определя  при различни  
температури . В ограничен  температурен  интервал  логаритъмът  
от налягането  на парите  на дадено  чисто  вещество  е линейна  
функция  на реципрочната  стойност  на абсолютната  температура  
в съответствие  с уравнението  на Клапейрон —Клаузиус : 
log p ¼ ΔHv 
2; 3RT þ C te 
където : 
p = налягането  на парите  в паскали  
ΔHv = скритата  топлина  на изпарение  в J mol  –1 
R = универсалната  газова  константа , 8,314 J mol  –1 K –1 
T = температурата  в K ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 34
 
1.4. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не е необходимо  да се използват  вещества  за сравнение . Преди  
всичко  те служат  за периодична  проверка  на действието  на 
метода , както  и да позволят  сравнение  на резултатите , 
получени  по различни  методи . 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.5.1.  Динамичен  метод  (метод  на Котрел ) 
1.5.1.1.  Принцип  
Налягането  на парите  се определя , като се измери  температурата  
на кипене  на веществото  при няколко  определени  налягания , 
грубо  между  10  3 и 10  5 Ра. Този  метод  се препоръчва  и за 
определяне  на температурата  на кипене . Той е подходящ  за 
тази цел до 600 K. На дълбочина  от 3 до 4 cm температурите  
на кипене  на течностите  са приблизително  с 0,1 °C по-високи  
отколкото  на повърхността  поради  хидростатичното  налягане  на 
стълба  течност . При метода  на Котрел  (4) термометърът  е 
поставен  в парите  над повърхността  на течността  и кипящата  
течност  се принуждава  непрекъснато  да се самоизпомпва  над 
резервоара  на термометъра . Резервоарът  е покрит  с тънък  слой  
течност , който  при атмосферно  налягане  е в равновесие  с 
парите . Така  термометърът  отчита  действителната  температура  
на кипене  без грешки , дължащи  се на прегряване  или на 
хидростатичното  налягане . Използваната  първоначално  от 
Котрел  помпа  e показана  на фигура  1. Кипящата  течност  се 
съдържа  в тръбата  А. Равномерното  кипене  е улеснено  от 
платинената  тел В, захваната  към дъното . Страничната  тръба  
С води  към кондензатор , а обвивката  D пречи  на студения  
кондензат  да достига  термометъра  Е. Когато  течността  А кипи , 
през двата  клона  на помпата  F над резервоара  на термометъра  
преминават  мехурчета  и течност . 
Фигура  1
 Фигура  2
 ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 35
 
Помпа  на Котрел  (4) 
A: Термодвойка  
B: Вакуумен  буферен  обем  
C: Манометър  
D: Вакуум  
E: Точка  на измерване  
F: Нагревател  около  150 W  
1.5.1.2.  Апаратура  
На фигура  2 e показан  много  точен  уред , използващ  принципа  
на Котрел . Той се състои  от тръба  със зона на кипене  в долната  
част, охладител  в средната  част и изпускателен  канал  и фланец  в 
горната  част. Помпата  на Котрел  е разположена  в зоната  на 
кипене , която  се нагрява  с електрически  елемент . Температурата  
се измерва  с термодвойка  в защитна  обвивка  или със съпротив­  
ителен  термометър , който  се вкарва  през фланеца  най-горе. 
Изпускателният  канал  е свързан  към системата  за регулиране  
на налягането . Последната  се състои  от вакуумпомпа , буферен  
обем , маностат  за подаване  на азот за регулиране  на налягането  
и манометър . 
1.5.1.3.  Методика  
Веществото  се поставя  в зоната  на кипене . Проблеми  могат  да 
възникнат  с веществата , които  не са в прахообразно  състояние , 
но в някои  случаи  те могат  да се решат , като се нагрее  охла­  
ждащият  кожух . Апаратът  се затваря  плътно  с фланеца  и 
веществото  се дегазира . С този метод  не могат  да се измерват  
вещества , които  образуват  пяна . 
След  това се задава  най-ниското  желано  налягане  и се включва  
нагряването . В същото  време  температурният  датчик  се свързва  
със записващо  устройство . 
Равновесието  е достигнато , когато  при постоянно  налягане  се 
отчита  една  и съща  температура  на кипене . Трябва  да се 
внимава  много  кипенето  да не става  на тласъци . Освен  това в 
охладителя  трябва  да се извършва  пълна  кондензация  на парите . 
Когато  се определя  налягането  на парите  на нискотопими  
твърди  вещества , трябва  да се вземат  мерки  да не се блокира  
кондензаторът . 
След  като се регистрира  тази равновесна  точка , се задава  по- 
високо  налягане . Процесът  продължава  по този начин  до 
достигане  на налягане  от 10  5 Ра (приблизително  от 5 до 10 
измервателни  точки  общо ). За проверка  равновесните  точки  
трябва  да се повторят  и при намаляване  на налягането . 
1.5.2.  Статичен  метод  
1.5.2.1.  Принцип  
При статичния  метод  (5) налягането  на парите  при термодин­  
амично  равновесие  се определя  за дадена  температура . Този  
метод  е подходящ  за вещества  и многокомпонентни  течности , 
както  и за твърди  тела в обхвата  от 10 до 10  5 Pa и ако се 
внимава , също  и в обхвата  от 10 –1 до 10 Pa.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 36
 
1.5.2.2.  Апаратура  
Оборудването  се състои  от термостатирана  вана  (точност  
± 0,2 K), контейнер  за пробата , свързан  към вакуумна  линия , 
манометър  и система  за регулиране  на налягането . Камерата  за 
проби  (фигура  3a) е свързана  към вакуумната  линия  през клапан  
и диференциален  манометър  (U-образна  тръба , съдържаща  
подходяща  манометрична  течност ), който  служи  за нулев  
индикатор . В зависимост  от обхвата  на налягането  и 
химичните  процеси  с веществото  в U-образната  тръба  могат  да 
бъдат  използвани  живак , силикони  и фталати . По екологични  
съображения  обаче , ако е възможно , употребата  на живак  
трябва  да се избягва . Изпитваното  вещество  не бива  да се 
разтваря  забележимо  или да реагира  с течността  в U-образната  
тръба . Вместо  U-образна  тръба  може  да се използва  манометър  
(фигура  3б). За обхвата  от нормално  налягане  до 10  2 Ра в 
манометъра  може  да се използва  живак , докато  силиконовите  
течности  и фталатите  са подходящи  под 10  2 Ра до 10 Ра. 
Съществуват  други  манометри , които  могат  да се използват  
под 10 2 Pa, а под 10 –1 Pa могат  да бъдат  използвани  дори  капац­  
итивни  манометри  с нагряваща  се мембрана . Температурата  се 
измерва  върху  външната  стена  на съда , съдържащ  пробата , или 
вътре  в самия  съд. 
1.5.2.3.  Методика  
При използване  на апарата  в съответствие  с фигура  3а U- 
образната  тръба  се напълва  с избраната  течност , която  трябва  
да се дегазира  при повишена  температура , преди  да започне  
отчитането . Изпитваното  вещество  се поставя  в апарата  и се 
дегазира  при понижена  температура . В случая  на 
многокомпонентна  проба  температурата  трябва  да бъде  дост­  
атъчно  ниска , за да се гарантира , че съставът  на материала  не 
се променя . Равновесие  може  да се установи  по-бързо  чрез 
разбъркване . Пробата  може  да се охлажда  с течен  азот или 
сух лед, но трябва  да се внимава  да се избегне  кондензацията  
на въздуха  или на помпената  течност . Клапанът  над съда  с 
пробата  се отваря  и в продължение  на няколко  минути  се 
извършва  засмукване , за да се отстрани  въздухът . Ако е необ­  
ходимо , операцията  по дегазирането  трябва  да се повтори  
няколко  пъти . 
Фигура  3a
 Фигура  3б
 ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 37
 
Когато  пробата  се нагрява  при затворен  клапан , налягането  на 
парите  се увеличава . Това  променя  равновесието  на течността  в 
U-образната  тръба . За да се компенсира  тази промяна , в апарата  
през клапан  се подава  азот или въздух , докато  диференциалният  
индикатор  на налягане  се върне  в нулево  положение . Необ­  
ходимото  за целта  налягане  може  да се отчете  от манометъра  
или от измервателен  уред  с по-голяма  точност . Това  налягане  
съответства  на налягането  на парите  на веществото  при дадената  
температура  на измерване . При използване  на апарата  от фигура  
3б налягането  на парите  се отчита  директно . 
Налягането  на парите  се определя  през подходящи  малки  
интервали  (приблизително  от 5 до 10 измервателни  точки  
общо ) до достигане  на желаната  максимална  температура . 
За проверка  отчитането  при ниски  температури  трябва  да се 
повтори . Ако стойностите , получени  при това повторно  
отчитане , не съвпадат  с кривата , получена  при повишаване  на 
температурата , това може  да се дължи  на една  от следните  
причини : 
i) пробата  все още съдържа  въздух  (например  при високов­  
искозни  материали ) или нискокипящи  вещества , които  се 
отделят  при нагряването ; 
ii) веществото  претърпява  химична  реакция  в изследвания  
температурен  интервал  (например  разграждане , 
полимеризация ). 
1.5.3.  Метод  на изотенископа  
1.5.3.1.  Принцип  
Изотенископът  (6) се основава  на принципа  на статичния  метод . 
Методът  включва  поставяне  на проба  в колба , поддържана  при 
постоянна  температура  и свързана  към манометър  или вакуум­  
помпа . По-летливите  примеси  на веществото  се отстраняват  чрез 
дегазиране  при намалена  температура . Налягането  на парите  на 
пробата  при избрани  температури  се уравновесява  от известно  
по стойност  налягане  на инертен  газ. Изотенископът  е 
разработен  за измерване  на налягане  на пари  на определени  
течни  въглеводороди , но може  да се използва  и за изследване  
на твърди  вещества . Методът  обикновено  не е подходящ  за 
многокомпонентни  системи . Резултатите  включват  само  малки  
грешки  при проби , съдържащи  нелетливи  примеси . Препоръчит­  
елният  обхват  е от 10 2 до 10 5 Pa. 
1.5.3.2.  Апаратура  
Пример  за измервателен  уред  е показан  на фигура  4. Можете  да 
намерите  пълно  описание  в ASTM D 2879—86 (6).  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 38
 
1.5.3.3.  Методика  
Когато  се изпитват  течности , самото  вещество  служи  за флуид  в 
диференциалния  манометър . В изотенископа  се поставя  
количество  течност , достатъчно  да запълни  резервоара  и късия  
клон  на манометъра . Изотенископът  се прикачва  към система  за 
вакуум  и се евакуира , след  което  се напълва  с азот. 
Евакуирането  и прочистването  на системата  се повтарят  два 
пъти , за да се отстрани  остатъчният  кислород . Така  напълненият  
изотенископ  се поставя  в хоризонтално  положение , така че 
пробата  да се разстели  в тънък  слой  в резервоара  за пробата  и 
в манометъра . Налягането  на системата  се намалява  до 133 Ра и 
пробата  внимателно  се нагрява  до прага  на закипяване  
(отстраняване  на разтворените  газове ). След  това изотенископът  
се поставя  в такова  положение , че пробата  да се върне  в 
резервоара  и да изпълни  късия  клон  на манометъра . Налягането  
се поддържа  на 133 Pa. Заостреният  край  на резервоара  за 
пробата  се нагрява  на малък  пламък , докато  отделената  от 
пробата  пара  се разшири  достатъчно , за да измести  част от 
пробата  в горната  част на резервоара  и в клона  на манометъра  
в посока  към манометричната  зона, като по този начин  се 
създава  изпълнено  с пари  и свободно  от азот пространство . 
След  това изотенископът  се поставя  в термостатирана  вана  и 
налягането  на азота  се регулира , докато  се изравни  с това на 
пробата . При равновесие  налягането  на азота  е равно  на 
налягането  на парите  на веществото . 
Фигура  4
 
При твърди  вещества  в зависимост  от обхвата  от налягания  и 
температури  се използват  манометрични  течности , като 
силиконови  флуиди  или фталати . Дегазираната  течност  на 
манометъра  се помества  в едно  разширение  върху  дългото  
рамо  на изотенископа . След  това твърдото  вещество , което  ще 
бъде  изследвано , се поставя  в резервоара  и се дегазира  при 
повишена  температура . После  изотенископът  се накланя  така, 
че течността  в манометъра  да навлезе  в U-образната  тръба . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 39
 
1.5.4.  Ефузионен  метод : везна  за измерване  на налягането  на 
парите  (7) 
1.5.4.1.  Принцип  
Проба  от изпитваното  вещество  се загрява  в малка  пещ и се поставя  
в евакуиран  стъклен  звънец . Пещта  е покрита  с капак , в който  има 
малки  отвори  с известни  диаметри . Парите  на веществото , които  се 
пропускат  през един  от отворите , се насочват  към блюдо  на везна  с 
голяма  чувствителност , която  също  е затворена  в евакуирания  
стъклен  звънец . При някои  постановки  блюдото  на везната  се 
намира  в хладилна  камера , осигуряваща  разсейване  на топлината  
навън  чрез топлопроводност , като блюдото  се охлажда  чрез лъчист  
топлообмен , така че изпусканите  пари  кондензират  върху  него. 
Въздействието  от струята  на парите  създава  усилие  върху  
везните . Налягането  на парите  може  да се намери  по два начина : 
пряко  от силата  върху  блюдото , а също  и от скоростта  на 
изпаряване  по формулата  на Херц —Кнудсен  (2): 
p ¼ G ﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃ  
2πRT Ü 10  3 
M s 
където : 
G = скоростта  на изпаряване  (kg s  –1 m –2 ) 
M = моларната  маса  (g mol  –1 ) 
T = температурата  (K) 
R = универсалната  газова  константа  (J mol  –1 K –1 ) 
P = налягането  на парите  (Pa)  
Препоръчителният  обхват  е от 10 –3 до 1 Pa.  
1.5.4.2.  Апаратура  
Основният  принцип  на апаратурата  е показан  на фигура  5. 
Фигура  5
 
А: Опорна  плоча  F: Хладилна  камера  и охлаждаща  шина  
B: Измервателен  уред  от магнито­  
електричната  система  G: Изпарителна  пещ 
C: Стъклен  звънец  H: Дюаров  съд с течен  азот 
D: Везна  с блюдо  I: Измерване  на температурата  на 
пробата  
E: Устройство  за измерване  на 
подналягане  J: Изследвано  вещество  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 40
 
1.5.5.  Ефузионен  метод : Кнудсенова  клетка  
1.5.5.1.  Принцип  
Методът  се основава  на измерване  на масата  от изпитваното  
вещество , която  изтича  под формата  на пари  за единица  време  от 
Кнудсенова  клетка  (8) през микроотверстие  в условията  на свръхв­  
акуум . Масата  на изпуснатите  пари  може  да се получи  или като се 
определи  загубата  на маса  от клетката , или чрез кондензация  на 
парите  при ниска  температура  и определяне  на количеството  на 
изпареното  вещество , като се използва  хроматографски  анализ . 
Налягането  на парите  се изчислява  чрез прилагане  на зависимостта  
на Херц —Кнудсен  (вж. точка  1.5.4.1) с корекционни  коефициенти , 
които  зависят  от параметрите  на апаратурата  (9). Препоръчит­  
елният  обхват  е от 10 –10 до 1 Pa (10)(11)(12)(13)(14).  
1.5.5.2.  Апаратура  
Основният  принцип  на апаратурата  е показан  на фигура  6. 
Фигура  6
 
1: Връзка  към вакуума  7: Капак  с резба  
2: Гнезда  за платинов  съпротивителен  
термометър  или за следене  и 
регулиране  на температурата  8: Крилчати  гайки  
3: Капак  за вакуумния  резервоар  9: Болтове  
4: О-пръстен  10: Ефузионни  клетки  от неръждаема  
стомана  
5: Алуминиев  вакуумен  резервоар  11: Нагревателен  елемент  
6: Устройство  за монтиране  и изваждане  
на ефузионните  клетки  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 41
 
1.5.6.  Ефузионен  метод : изотермична  термогравиметрия  
1.5.6.1.  Принцип  
Този  метод  се основава  на определянето  на повишени  скорости  на 
изпаряване  на изследваното  вещество  при повишени  температури  
и атмосферно  налягане  чрез използване  на термогравиметрия  (10)­
(15)(16)(17)(18)(19)(20). Скоростите  на изпаряване  v T се определят  
чрез излагане  на избраното  съединение  на бавен  поток  от инертен  
газ и следене  на намаляването  на теглото  при определени  
фиксирани  температури  T (в келвини ) през съответни  интервали  
от време . Наляганията  на парите  p T се изчисляват  въз основа  на 
стойностите  v T , като се използва  линейната  зависимост  между  
логаритъма  на налягането  на парите  и логаритъма  на скоростта  
на изпаряване . Ако е необходимо , може  да се извърши  екстрап­  
олиране  за температури  20 и 25 °C чрез регресионен  анализ  на log 
p T като функция  на 1/T. Този  метод  е подходящ  за вещества  с 
ниски  налягания  на парите  като 10 –10 Pa (10  –12 mbar) и с чистота  
възможно  най-близка  до 100 %, за да се избегне  неточно  тълкуване  
на измерените  намалявания  на теглото . 
1.5.6.2.  Апаратура  
Основният  принцип  на опитната  постановка  е показан  на 
фигура  7. 
Фигура  7
 
Плочата  с пробата , висяща  на микровезна  в камера  с регулиране  на 
температурата , се обдухва  със струя  от сух газ азот, който  отнася  
изпарените  молекули  от изследваното  вещество . След  напускане  на 
камерата  газовата  струя  се пречиства  в сорбционен  модул . 
1.5.6.3.  Методика  
Изследваното  вещество  се нанася  върху  повърхността  на 
матирана  стъклена  плоча  под формата  на хомогенен  слой . В 
случая  на твърди  материали  плочата  се намокря  равномерно  с 
разтвор  на веществото  в подходящ  разтворител  и се изсушава  в 
инертна  атмосфера . За измерването  плочата  с покритието  се 
окачва  в термогравиметричния  анализатор , след  което  теглото  
непрекъснато  се измерва  във функция  от времето . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 42
 
Скоростта  на изпаряване  v T при определена  температура  се 
изчислява  въз основа  на намаляването  на теглото  Δm на 
плочата  с пробата  по формулата : 
v T ¼ Δm 
F Ö t gcm  –2 h –1 Ê Ì  
където  F е площта  на покритието  от изследваните  вещества  — 
обикновено  площта  на плочата  с пробата , а t е времето  за 
намаляване  на теглото  с Δm. 
Налягането  на парите  p T се изчислява  въз основа  на завис­  
имостта  му от скоростта  на изпаряване  v T : 
Log p  T = C + D log v  T 
където  C и D са константи , специфични  за използваната  опитна  
постановка , които  зависят  от диаметъра  на измервателната  
камера  и от дебита  на газа. Тези  константи  трябва  да бъдат  
определени  еднократно  чрез измерване  на набор  от съединения  
с известно  налягане  на парите  и регресионен  анализ  на log p  T 
като функция  на log v  T (11)(21)(22).  
Зависимостта  между  налягането  на парите  p Т и температурата  в 
градуси  по Келвин  се дава от: 
Log p  T = A + B 1/T  
където  A и B са константи , които  се получават  чрез регресионен  
анализ  на log pT като функция  на 1/T. По тази формула  
налягането  на парите  може  да бъде  изчислено  за всяка  друга  
температура  чрез екстраполация . 
1.5.7.  Метод  с насищане  на газ (23)  
1.5.7.1.  Принцип  
При стайна  температура  и известен  дебит  инертен  газ се 
пропуска  през или над проба  от изследваното  вещество  дост­  
атъчно  бавно , за да се осигури  насищане . Постигането  на 
насищане  в газовата  фаза  е от критично  значение . Пренасяното  
вещество  се улавя  в общия  случай  чрез сорбент  и се определя  
количеството  му. Алтернатива  на улавянето  на парите  и 
последващия  им анализ  са аналитичните  методи  с непрекъснат  
характер  (като газовата  хроматография ), които  могат  да се 
използват  за определяне  на количеството  на пренасяното  
вещество . Налягането  на парите  се изчислява , като се приема , 
че е в сила  законът  за идеалния  газ и че общото  налягане  на 
газова  смес  е равно  на сумата  от наляганията  на участващите  в 
сместа  газове . Парциалното  налягане  на изследваното  вещество , 
т.е. налягането  на парите , се изчислява  въз основа  на известния  
общ газов  обем  и теглото  на пренасяното  вещество . 
Методиката  с насищане  на газ е приложима  за твърди  и течни  
вещества . Тя може  да се използва  за налягания  на парите  до 
минимум  10  –10 Pa (10)(11)(12)(13)(14). Методът  е най-надежден  
за налягания  на парите  под 10 3 Pa. Над 10 3 Pa за наляганията  на 
парите  по принцип  се определят  завишени  стойности , вероятно  
поради  образуването  на аерозол . Тъй като измерванията  на 
налягането  на парите  се извършват  при стайна  температура , не 
е необходимо  екстраполиране  на данни  от високи  температури  и 
екстраполацията  от високи  температури , която  често  води  до 
сериозни  грешки , е избегната . 
1.5.7.2.  Апаратура  
Методиката  изисква  използване  на камера  с постоянна  
температура . Скицата  на фигура  3 представлява  камера , 
съдържаща  три прободържателя  за твърди  проби  и три пробо­  
държателя  за течни  проби , които  позволяват  трикратен  анализ  
на твърда  или течна  проба . Температурата  се регулира  с точност  
± 0,5 °C или по-висока . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 43
 
Фигура  8
 
В общия  случай  като инертен  газ носител  се използва  азот, но в 
някои  случаи  може  да е необходимо  да се използва  друг  газ (24). 
Газът  носител  трябва  да бъде  сух. Газовият  поток  се разделя  на 
6 потока , управлявани  с иглени  клапани  (диаметър  на отвора  
приблизително  0,79 mm), и навлиза  в камерата  през медна  
тръба  с вътрешен  диаметър  3,8 mm. След  изравняване  на 
температурата  газът  преминава  през пробата  и уловителя  със 
сорбента  и излиза  от камерата . 
Твърдите  проби  се зареждат  в стъклена  тръба  с вътрешен  диаметър  
5 mm между  запушалки  от стъклена  вата (вж. фигура  9). На фигура  
10 е показан  прободържател  за течна  проба  и система  от сорбенти . 
Най-възпроизводимият  метод  за измерване  на налягането  на парите  
на течност  е да се разпредели  течността  върху  стъклени  гранули  
или върху  инертен  сорбент , като например  кварц , и да се запълни  
прободържателят  с тези гранули . Като  алтернативен  вариант  газът  
носител  може  да бъде  принуден  да преминава  през груба  фрита  и да 
барботира  през стълб  от течното  вещество , обект  на изследването . 
Фигура  9
 Фигура  10
 ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 44
 
Системата  от сорбенти  съдържа  предна  и спомагателна  
сорбентна  част. При много  ниски  налягания  на парите  
сорбентът  задържа  много  малки  количества  и адсорбцията  
върху  стъклената  вата и стъклената  тръба  между  пробата  и 
сорбента  може  да се окаже  сериозен  проблем . 
Охлажданите  със сух лед (CO  2 ) уловители  са друг  ефикасен  
начин  за натрупване  на изпареното  вещество . Те не пораждат  
обратно  налягане  в колоната  за насищане  и също  така е лесно  
отстраняването  на уловеното  вещество  с определяне  на колич­  
еството  му. 
1.5.7.3.  Методика  
Дебитът  на изходящия  газ носител  се измерва  при стайна  
температура . Дебитът  се проверява  често  по време  на опита , 
за да се гарантира , че общият  обем  на газа носител  не е с 
точно  определена  стойност . Предпочита  се непрекъснато  
следене  с масов  дебитомер . За насищането  на газовата  фаза  
може  да е необходимо  значително  време  на контакт  и 
съответно  доста  ниски  дебити  на газа (25).  
Накрая  на опита  предната  и спомагателната  част на сорбента  се 
анализират  поотделно . Съединението  се десорбира  от всяка  от 
частите  чрез добавяне  на разтворител . Получените  разтвори  се 
подлагат  на количествен  анализ , за да се определи  теглото , 
десорбирано  от всяка  от частите . Изборът  на метода  за анализ  
(както  и изборът  на сорбента  и разтворителя  за десорбцията ) се 
определя  от природата  на изследваното  вещество . Ефектив­  
ността  на десорбцията  се определя , като се инжектира  
предварително  известно  количество  от пробата  върху  
сорбента , десорбира  се и се анализира  полученото  количество . 
Важно  е ефективността  на десорбцията  да се проверява  при или 
близо  до концентрацията  на пробата  при условията  на опита . 
За да се гарантира  че газът  носител  е наситен  с изследваното  
вещество , се използват  три различни  дебита  на газа. Ако изчис­  
леното  налягане  на парите  не показва  зависимост  от дебита , се 
приема , че газът  е наситен . 
Налягането  на парите  се изчислява  по формулата : 
p ¼ W 
V Ü RT 
M 
където : 
p = налягане  на парите  (Pa)  
W = масата  на изпареното  вещество , обект  на изследването  (g) 
V = обема  на наситения  газ (m  3 ) 
R = универсалната  газова  константа , 8,314 (J mol  –1 K –1 ) 
T = температурата  (K) 
M = моларната  маса  на изследваното  вещество  (g mol  –1 ) 
Измерените  обеми  трябва  да се коригират  според  разликите  в 
температурата  и налягането  между  дебитомера  и колоната  за 
насищане . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 45
 
1.5.8.  Въртящ  се ротор  
1.5.8.1.  Принцип  
Този  метод  използва  измервателен  уред  за вискозитет  с въртящ  
се ротор , в който  измервателният  елемент  е малко  стоманено  
топче , което  е окачено  в магнитно  поле  и се привежда  във 
въртеливо  движение  чрез въртящо  поле  (26)(27)(28). Наличието  
на измервателни  намотки  позволява  да се измерва  скоростта  му 
на въртене . Когато  топчето  достигне  дадена  скорост  на въртене  
(обикновено  около  400 оборота  в секунда ), задвижването  му се 
прекратява  и скоростта  му започва  да намалява  поради  триенето  
с газовете . Намаляването  на скоростта  на въртене  се измерва  
като функция  на времето . Налягането  на парите  се получава  
от забавянето  на стоманеното  топче , което  зависи  от налягането . 
Препоръчителният  обхват  е от 10 –4 до 0,5 Pa.  
1.5.8.2.  Апаратура  
На фигура  11 е показан  схематичен  чертеж  на опитната  поста­  
новка . Измервателната  глава  е поставена  в термостатиран  съд с 
регулиране  на температурата  с точност  до 0,1 °С. Контейнерът  с 
пробата  е поставен  в отделен  съд, също  с регулиране  на 
температурата  с точност  до 0,1 °С. Всички  останали  части  на 
постановката  се поддържат  на по-висока  температура , за да се 
предотврати  кондензиране . Целият  апарат  е свързан  към система  
с висок  вакуум . 
Фигура  11
 
2. РЕЗУЛТАТИ  И ПРОТОКОЛИРАНЕ  
2.1. РЕЗУЛТАТИ  
При всеки  от описаните  методи  налягането  на парите  трябва  да 
се определи  поне  за две температури . За да се провери  линей­  
ността  на кривата  на налягането  на парите , е за предпочитане  да 
се направят  три или повече  измервания  в интервала  0 ÷ 50 ° С. 
В случая  на ефузионния  метод  (кнудсенова  клетка  и 
изотермична  термогравиметрия ) и на метода  с насищане  на газ 
вместо  0 ÷ 50 ° С се препоръчва  температурен  интервал  на 
измерване  120 ÷ 150 ° С. 
2.2. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  
информация : 
— използван  метод , ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 46
 
— точна  спецификация  на веществото  (вид и примеси ) и 
предварителни  етапи  на пречистване , ако има такива , 
— най-малко  две стойности  на налягането  на парите  и 
температурата , а за предпочитане  три или повече  стойности , 
в интервала  0 ÷ 50 ° С (или 120 ÷ 150 ° С), 
— ако за избрания  метод  е технически  възможно , поне  една  от 
температурите  следва  да бъде  по-малка  или равна  на 25 °С, 
— всички  изходни  данни , 
— кривата  на зависимостта  на log p от 1/Т, 
— оценка  за налягането  на парите  при 20 или 25 °С. 
Ако се наблюдава  преход  (промяна  на агрегатното  състояние , 
разграждане ), трябва  да се отбележи  следната  информация : 
— естество  на промяната , 
— температура , при която  се извършва  промяната  при 
атмосферното  налягане , 
— налягане  на парите  при 10 и 20 °С под температурата  на 
прехода  и 10 и 20 °С над тази температура  (освен  ако 
преходът  не е от твърдо  към газообразно  състояние ). 
Цялата  информация  и забележките , свързани  с интерпретацията  
на резултатите , трябва  да се включат  в протокола , особено  
когато  става  дума  за примеси  или за агрегатното  състояние  на 
веществото . 
3. ЛИТЕРАТУРА  
(1) Официален  вестник  на Европейските  общности  L 383 А, 
26—47 (1992 г.). 
(2) Ambrose, D. (1975). Experimental Thermodynamics, Vol. II, 
Le Neindre, B., and Vodar, B., Eds., Butterworths, London.  
(3) Weissberger R., ed. (1959). Technique of Organic Chemistry, 
Physical Methods of Organic Chemistry, 3rd ed., Vol. I, Part I. 
Chapter IX, Interscience Publ., New York.  
(4) Glasstone, S. (1946). Textbook of Physical Chemistry, 2nd ed., 
Van Nostrand Company, New York.  
(5) NF T 20—048 AFNOR (September 1985). Chemical products 
for industrial use — Determination of vapour pressure of solids and liquids within a range from 10
 –1 to 10  5 Pa — Static 
method.  
(6) ASTM D 2879—86, Standard test method for vapour pressure 
— temperature relationship and initial decomposition tempe ­
rature of liquids by isoteniscope.  
(7) NF T 20—047 AFNOR (September 1985). Chemical products 
for industrial use –Determination of vapour pressure of solids 
and liquids within range from 10  –3 to 1 Pa — Vapour pressure 
balance method.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 47
 
(8) Knudsen, M. (1909). Ann. Phys. Lpz., 29, 1979; (1911), 34, 
593. 
(9) Ambrose, D., Lawrenson, I.J., Sprake, C.H.S. (1975). J. Chem. 
Thermodynamics 7, 1173.  
(10) Schmuckler, M.E., Barefoot, A.C., Kleier, D.A., Cobranchi, 
D.P. (2000), Vapor pressures of sulfonylurea herbicides; Pest Management Science 56, 521—532.
 
(11) Tomlin, C.D.S. (ed.), The Pesticide Manual, Twelfth Edition 
(2000)  
(12) Friedrich, K., Stammbach, K., Gas chromatographic determi ­
nation of small vapour pressures determination of the vapour 
pressures of some triazine herbicides. J. Chromatog. 16 (1964), 
22—28  
(13) Grayson, B.T., Fosbraey, L.A., Pesticide Science 16 (1982), 
269—278.  
(14) Rordorf, B.F., Prediction of vapor pressures, boiling points and 
enthalpies of fusion for twenty-nine halogenated dibenzo-p- dioxins, Thermochimia Acta 112 Issue 1 (1987), 117—122.
 
(15) Gückel, W., Synnatschke, G., Ritttig, R., A Method for Deter ­
mining the Volatility of Active Ingredients Used in Plant Protection; Pesticide Science
 4 (1973) 137—147.  
(16) Gückel, W., Synnatschke, G., Ritttig, R., A Method for Deter ­
mining the Volatility of Active Ingredients Used in Plant Protection II. Application to Formulated Products; Pesticide 
Science 5 (1974) 393—400.
 
(17) Gückel, W., Kaestel, R., Lewerenz, J., Synnatschke, G., A 
Method for Determining the Volatility of Active Ingredients Used in Plant Protection. Part III: The Temperature Relati ­
onship between Vapour Pressure and Evaporation Rate; 
Pesticide Science 13 (1982) 161—168.
 
(18) Gückel, W., Kaestel, R., Kroehl, T., Parg, A., Methods for 
Determining the Vapour Pressure of Active Ingredients Used 
in Crop Protection. Part IV: An Improved Thermogravimetric Determination Based on Evaporation Rate; Pesticide Science 45 (1995) 27—31.
 
(19) Kroehl, T., Kaestel, R., Koenig, W., Ziegler, H., Koehle, H., 
Parg, A., Methods for Determining the Vapour Pressure of Active Ingredients Used in Crop Protection. Part V: Thermog ­
ravimetry Combined with Solid Phase MicroExtraction 
(SPME); Pesticide Science, 53 (1998) 300—310.
 
(20) Tesconi, M., Yalkowsky, S.H., A Novel Thermogravimetric 
Method for Estimating the Saturated Vapor Pressure of Low- 
Volatility Compounds; Journal of Pharmaceutical Science 87 ­
(12) (1998) 1512—20.  
(21) Lide, D.R. (ed.), CRC Handbook of Chemistry and Physics, 
81th ed.(2000), Vapour Pressure in the Range -25 °C to 
150 °C.  
(22) Meister, R.T. (ed.), Farm Chemicals Handbook, Vol. 88 (2002)  
(23) 40 CFR, 796. (1993). pp 148—153, Office of the Federal 
Register, Washington DC  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 48
 
(24) Rordorf B.F. (1985). Thermochimica Acta 85, 435.  
(25) Westcott et al. (1981). Environ. Sci. Technol. 15, 1375.  
(26) Messer G., Röhl, P., Grosse G., and Jitschin W. (1987). J. Vac. 
Sci. Technol. (A), 5(4), 2440.  
(27) Comsa G., Fremerey J.K., and Lindenau, B. (1980). J. Vac. 
Sci. Technol. 17(2), 642.  
(28) Fremerey, J.K. (1985). J. Vac. Sci. Technol. (A), 3(3), 1715.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 49
 
Допълнение  
Метод  за оценка  
ВЪВЕДЕНИЕ  
Стойностите  по оценка  на налягането  на парите  могат  да се използват : 
— за да се прецени  кой от експерименталните  методи  е подходящ , 
— за да се осигури  приблизителна  оценка  или пределна  стойност  в 
случаите , в които  експерименталният  метод  не може  да бъде  
приложен  по технически  причини . 
МЕТОД  ЗА ОЦЕНКА  
Налягането  на парите  на течности  и твърди  вещества  може  да се изчисли , 
като се използва  преобразуваната  зависимост  на Уотсън  (а). Опитно  е необ­  
ходимо  да се определи  само  нормалната  температура  на кипене . Методът  е 
приложим  в целия  обхват  на наляганията  от 10 5 до 10  –5 Ра. 
Подробна  информация  за метода  е дадена  в „Наръчника  на методите  за 
оценка  на химичните  свойства “ (б). Вижте  също  OECD Environmental 
Monograph No.67 (c).  
МЕТОДИКА  НА ИЗЧИСЛЯВАНЕ  
Налягането  на парите  се изчислява , както  следва : 
lnP vp ≈ ΔH vb 
ΔZ b RT b 1 – 3 – 2  T 
T b Í Î  m 
T 
T b – 2m 3 – 2  T 
T b Í Î  m – 1 
ln T 
T b 2 
6 6 4 3 
7 7 5
 
където : 
T = температурата , за която  се прави  изчислението  
T b = нормалната  температура  на кипене  
P VP = налягането  на парите  при температура  Т 
ΔH Vb = топлината  на изпарение  
ΔZ b = коефициентът  на свиваемост  (оценен  на 0,97)  
m = опитно  определен  коефициент , зависещ  от агрегатното  състояние  
при температурата , за която  се прави  изчислението  
Освен  това, 
ΔH vb 
T b ¼ K F ð8; 75 þ R ln T b Þ 
където  K  F е опитно  определен  коефициент , отчитащ  полярността  на 
веществото . В препратка  (б) са дадени  коефициентите  K F за няколко  типа  
съединения . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 50
 
Доста  често  могат  да се намерят  данни , в които  е дадена  температурата  на 
кипене  при понижено  налягане . В такъв  случай  налягането  на парите  се 
изчислява , както  следва : 
lnP vp ≈ lnP 1 þ ΔH v1 
ΔZ b RT 1 1 – 3 – 2  T 
T 1 Í Î  m T 1 
T – 2m 3 – 2  T 
T 1 Í Î  m – 1 
ln T 
T 1 " #  
където  T 1 е температурата  на кипене  при пониженото  налягане  Р 1 . 
ПРОТОКОЛ  
Когато  се използва  метод  за оценка , в протокола  трябва  да се включи  пълна  
документация  за изчисленията . 
ЛИТЕРАТУРА  
(а) Watson, K.M. (1943). Ind. Eng. Chem, 35, 398.  
(б) Lyman, W.J., Reehl, W.F., Rosenblatt, D.H. (1982). Handbook of Chemical 
Property Estimation Methods, McGraw-Hill.  
(в) OECD Environmental Monograph No.67. Application of Structure-Activity 
Relationships to the Estimation of Properties Important in Exposure Assessment (1993).
 ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 51
 
А.5. ПОВЪРХНОСТНО  НАПРЕЖЕНИЕ  
1. МЕТОД  
Описаните  методи  се основават  на Ръководството  на ОИСР  за 
провеждане  на изпитвания  (1). Основните  принципи  са дадени  в 
препратка  (2). 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Описаните  методи  се прилагат  за изпитване  на повърхностното  
напрежение  на водни  разтвори . 
Преди  да се извършат  тези изпитвания , е полезно  да има 
предварителна  информация  за разтворимостта  във вода , 
структурата , хидролизните  свойства  и критичната  концентрация  
на мицелообразуване  на веществото . 
Описаните  по-долу  методи  са приложими  за повечето  химични  
съединения  без каквито  и да било  ограничения , свързани  с 
тяхната  степен  на чистота . 
Измерването  на повърхностното  напрежение  с тензиометър  с 
пръстен  е ограничено  до водни  разтвори  с динамичен  
вискозитет  по-нисък  от 200 mPa s.  
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Енталпията  на единица  площ  от свободната  повърхност  се 
нарича  повърхностно  напрежение . 
Повърхностното  напрежение  се измерва  в: 
N/m (SI-единица ) или 
mN/m (SI- подединица ) 
1 N/m = 10  3 DYN/cm  
1 mN/m = 1 DYN/cm в излязлата  от употреба  система  CGS.  
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не е необходимо  да се използват  вещества  за сравнение  във 
всички  случаи , при които  се изпитва  ново  вещество . Те трябва  
преди  всичко  да служат  за периодична  проверка  на действието  
на метода , както  и да позволяват  сравнение  с резултатите , 
получени  по други  методи . 
В препратки  (1) и (3) са дадени  сравнителни  вещества , които  
покриват  широк  обхват  от повърхностни  напрежения . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДИТЕ  
Методите  се основават  на измерването  на максималната  сила , 
която  трябва  да се приложи  вертикално  върху  скоба  или 
пръстен , намиращи  се в контакт  с повърхността  на изпитваната  
течност , поставена  в измервателен  съд, за да се отделят  от 
повърхността  ѝ, или върху  пластинка , единият  край  на която  
се допира  до повърхността , за да се прекъсне  образуваният  
филм . 
Веществата , които  се разтварят  във вода  до концентрация  най- 
малко  1 mg/l, ce изпитват  във воден  разтвор  само  при една  
концентрация . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Методите  могат  да осигурят  по-висока  точност  от тази, която  
вероятно  се изисква  при полеви  измервания . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 52
 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДИТЕ  
Приготвя  се разтвор  на веществото  в дестилирана  вода . Конце­  
нтрацията  на този разтвор  трябва  да бъде  90 % от конце­  
нтрацията  на наситения  разтвор  на веществото  във вода ; 
когато  разтворимостта  на веществото  надвишава  1 g/l, при 
изпитванията  се използва  разтвор  с концентрация  1 g/l. Не е 
необходимо  да се извършват  изпитвания  върху  вещества , 
чиято  разтворимост  във вода  е по-ниска  от 1 mg/l.  
1.6.1.  Метод  с използване  на пластинка  
Виж  ISO 304 и NF T 73-060 ( Повърхностноактивни  вещества  — 
определяне  на повърхностното  напрежение  чрез изтегляне  на 
течни  филми ). 
1.6.2.  Метод  с използване  на скоба  
Виж  ISO 304 и NF T 73-060 ( Повърхностноактивни  вещества  — 
определяне  на повърхностното  напрежение  чрез изтегляне  на 
течни  филми ). 
1.6.3.  Метод  с използване  на пръстен  
Виж  ISO 304 и NF T 73-060 ( Повърхностноактивни  вещества  — 
определяне  на повърхностното  напрежение  чрез изтегляне  на 
течни  филми ). 
1.6.4.  Метод  на ОИСР  с хармонизиран  пръстен  
1.6.4.1.  Апаратура  
За това изпитване  могат  да се използват  тензиометри . Те се 
състоят  от следните  елементи : 
— подвижна  масичка  за пробата , 
— система  за измерване  на силата , 
— измервателно  тяло  (пръстен ), 
— измервателен  съд. 
1.6.4.1.1. П о д в и ж н а м а с и ч к а з а п р о б а т а 
Подвижната  масичка  е предназначена  да поддържа  
измервателния  съд с контролируема  температура , в който  е 
поставена  течността  за изпитване . Тя е монтирана  на стенд  
заедно  със системата  за измерване  на силата . 
1.6.4.1.2. С и с т е м а з а и з м е р в а н е н а с и л а т а 
Системата  за измерване  на силата  (виж фигурата ) е разположена  
над масичката  за пробата . Грешката  при измерването  на силата  
не бива  да надвишава  ± 10  -6 N, което  съответства  на грешка  в 
границите  на ± 0,1 mg при измерване  на масата . В повечето  
случаи  измервателната  скала  на разпространените  в търговската  
мрежа  тензиометри  е калибрирана  в mN/m, така че повърхно­  
стното  напрежение  може  да се отчита  направо  в mN/m с точност  
0,1 mN/m.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 53
 
1.6.4.1.3. И з м е р в а т е л н о т я л о ( п р ъ с т е н ) 
Пръстенът  обикновено  се прави  от платиново -иридиева  жица  с 
дебелина  около  0,4 mm и обиколка  60 mm. Пръстенът  се 
провесва  в хоризонтално  положение  от метална  ос и 
монтираща  скоба , направена  от жица , така че да се осигури  
връзката  с измервателната  система  (вж. фигурата ). 
Фигура  
Измервателно  тяло  
(всички  размери  са дадени  в милиметри )
 
1.6.4.1.4. И з м е р в а т е л е н с ъ д 
Измервателният  съд, съдържащ  разтвора  за изпитване , е стъклен  
съд, чиято  температура  може  да се контролира . Той трябва  да е 
проектиран  така, че по време  на измерването  температурата  на 
изпитвания  разтвор  и на газовата  фаза  над него  да остава  
постоянна , а пробата  да не може  да се изпарява . Допуска  се 
използването  на цилиндрични  стъклени  съдове  с вътрешен  
диаметър  не по-малък  от 45 mm.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 54
 
1.6.4.2.  Подготовка  на апаратурата  
1.6.4.2.1. П о ч и с т в а н е 
Стъклените  съдове  се почистват  внимателно . Ако е необходимо , 
те се измиват  с гореща  бихромна  смес , след  това със 
сироповидна  фосфорна  киселина  (от 83 до 98 тегл. % Н 3 РО 4 ), 
основно  се изплакват  с течаща  вода  и накрая  се измиват  с 
бидестилирана  вода  до неутрална  реакция . След  това се 
подсушават  или се изплакват  с част от течната  проба , която  
подлежи  на изпитване . 
Пръстенът  първо  се изплаква  основно  с вода , за да се отстранят  
всички  разтворими  във вода  вещества . После  за кратко  се потапя  
в бихромна  смес , измива  се с бидестилирана  вода  до неутрална  
реакция  и накрая  се загрява  за малко  над метанолов  пламък . 
Забележка : 
Замърсяванията  от вещества , които  не се разтварят  или 
разрушават  от бихромната  смес  и от фосфорната  киселина , 
като силиконовите  материали , трябва  да се отстранят  с 
помощта  на подходящ  органичен  разтворител . 
1.6.4.2.2. К а л и б р и р а н е н а а п а р а т у р а т а 
Подготовката  на апаратурата  се състои  в проверка  на нулевата  
точка  и настройване  на показанията  на инструмента , което  да 
позволи  провеждането  на достоверни  измервания  в mN/m.  
Инсталиране  
Апаратурата  трябва  да се нивелира  с помощта , например , на 
спиртен  нивелир  върху  основата  на тензиометъра , като се 
регулират  нивелиращите  винтове  на основата . 
Нагласяване  на нулата  
След  монтирането  на пръстена  върху  апаратурата  и преди  
потапянето  му в течността  показанието  на тензиометъра  трябва  
да се нулира  и да се провери  дали  пръстенът  е разположен  
успоредно  на повърхността  на течността . За тази цел течната  
повърхност  може  да се използва  като огледало . 
Калибриращи  процедури  
Действителното  пробно  калибриране  може  да се извърши  с 
помощта  на една  от следните  две процедури : 
а) Чрез  масата : при процедурата  се използват  тежести  с 
определено  тегло  (между  0,1 и 1,0 g), разположени  върху  
пръстена . Калибрационният  коефициент  Ф а , с който  се 
умножават  всички  показания  на инструмента , се определя  
по следното  уравнение  (1): 
Φ a ¼ σ r 
σ a (1) 
където : 
σ r ¼ mg 
2b (mN/m)  
m = масата  на допълнителната  тежест  (g) 
g = земното  ускорение  (981 cm s  -2 при морското  равнище ) 
b = средната  обиколка  на пръстена  (cm)  
σ а = показанието  на тензиометъра  след  поставянето  на 
тежестта  върху  пръстена  (mN/m).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 55
 
б) Чрез  вода : използва  се чиста  вода , чието  повърхностно  
напрежение  например  при 23  o С е равно  на 72,3 mN/m. 
Тази  процедура  се изпълнява  по-бързо , отколкото  
калибрирането  с тежести , но винаги  съществува  опасност  
повърхностното  напрежение  на водата  да не е истинското  
поради  наличието  на следи  от повърхностноактивни  
вещества  като замърсители . 
Калибрационният  коефициент  Ф b , по който  трябва  да се 
умножават  всички  показания  на инструмента , се определя  
по следното  уравнение  (2): 
Φ b ¼ σ o 
σ g (2) 
където : 
σ o = стойността  на повърхностното  напрежение  на водата , 
дадена  в препратката  (mN/m)  
σ g = измерената  стойност  на повърхностното  напрежение  
на водата  (mN/m) като и двете  се взимат  при една  и 
съща  температура . 
1.6.4.3.  Подготовка  на пробите  
Приготвят  се водни  разтвори  с необходимите  концентрации  от 
изпитваните  веществата , които  не съдържат  неразтворени  
вещества . 
Разтворът  трябва  да се поддържа  при постоянна  температура  
(± 0,5  o С). Тъй като повърхностното  напрежение  на разтвора  в 
измервателния  съд се променя  с течение  на времето , трябва  да 
се направят  няколко  измервания  през различни  интервали  от 
време  и да се начертае  крива , показваща  зависимостта  на 
повърхностното  напрежение  от времето . Когато  не се набл­  
юдават  повече  изменения , се счита , че е достигнато  равнов­  
есното  състояние . 
Прахът  и газообразните  замърсявания  от други  вещества  пречат  
на измерването . Затова  трябва  да се работи  под защитен  
похлупак . 
1.6.5.  Условия  на изпитването  
Изпитването  се извършва  при 20  o С, като температурата  се 
контролира  с точност  от ± 0,5  o С. 
1.6.6.  Провеждане  на изпитването  
Изпитваният  разтвор  се прехвърля  в добре  почистен  
измервателен  съд, като се внимава  да не се образува  пяна . 
След  това съдът  се поставя  върху  масичката  на измервателната  
апаратура . Горният  край  на масичката  заедно  с измервателния  
съд се повдига , докато  пръстенът  се потопи  под повърхността  на 
разтвора . После  горният  край  на масичката  се сваля  постепенно  
и равномерно  (със скорост  приблизително  0,5 cm/min), така че 
пръстенът  да се отдели  от повърхността . Това  продължава  до 
достигане  на максималната  стойност  на силата . Течният  слой , 
прикрепен  към пръстена , не бива  да се отделя  от него . След  
приключване  на изпитването  пръстенът  отново  се потапя  под 
повърхността  и измерването  се повтаря , докато  се достигне  
постоянна  стойност  на повърхностното  напрежение . При всяко  
определяне  трябва  да се записва  времето  от момента  на 
прехвърлянето  на разтвора  в измервателния  съд. Отчита  се макс­  
ималната  сила , необходима  за отделянето  на пръстена  от 
повърхността  на течността . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 56
 
2. ДАННИ  
За да се изчисли  повърхностното  напрежение , отчетеното  
показание  на апаратурата  в mN/m първо  се умножава  по 
калибрационния  коефициент  Ф а или Ф b в зависимост  от 
използваната  процедура  на калибриране . Така  се получава  
стойност , която  е само  приблизителна  и се нуждае  от корекции . 
Харкинс  и Джордан  (4) са определили  емпирично  корекц­  
ионните  коефициенти  за измерените  стойности  на повърхно­  
стното  напрежение  по метода  на пръстена . Тези  стойности  
зависят  от размерите  на пръстена , плътността  на течността  и 
нейното  повърхностно  напрежение . 
Тъй като определянето  на корекционния  коефициент  по 
таблиците  на Харкинс  и Джордан  за всяко  отделно  измерване  
е много  трудоемък  процес , при изчисляването  на повърхно­  
стното  напрежение  на водни  разтвори  може  да се използва  
улеснена  процедура , която  отчита  от таблица  направо  
коригираната  стойност  на повърхностното  напрежение . (Когато  
отчетените  при опита  стойности  се намират  между  посочените  в 
таблицата , се прилага  интерполация ). 
Таблица  
Коригиране  на измереното  п овърхностно  напрежение  
Само  за водни  разтвори , ρ = 1 g/cm  3 
R = 9,55 mm ( среден  радиус  на пръстена ) 
r = 0,185 mm ( радиус  на проводника , от който  е 
направен  пръстенът ) 
Отчетена  стойност  в резултат  от 
изпитването  (mN/m) Коригирана  стойност  (mN/m) 
Калибриране  с тежести  (вж. 
1.6.4.2.2, буква  a) Калибриране  с вода  (вж. 1.6.4.2, 
буква  б) 
20 16,9 18,1 
22 18,7 20,1 
24 20,6 22,1 26 22,4 24,1 28 24,3 26,1 30 26,2 28,1 32 28,1 30,1 34 29,9 32,1 36 31,8 34,1 38 33,7 36,1 40 35,6 38,2 42 37,6 40,3 
44 39,5 42,3 
46 41,4 44,4 48 43,4 46,5 50 45,3 48,6 52 47,3 50,7 54 49,3 52,8 56 51,2 54,9
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 57
 
Отчетена  стойност  в резултат  от 
изпитването  (mN/m) Коригирана  стойност  (mN/m) 
Калибриране  с тежести  (вж. 
1.6.4.2.2, буква  a) Калибриране  с вода  (вж. 1.6.4.2, 
буква  б) 
58 53,2 57,0 
60 55,2 59,1 62 57,2 61,3 64 59,2 63,4 66 61,2 65,5 68 63,2 67,7 70 65,2 69,9 72 67,2 72,0 
74 69,2 — 
76 71,2 — 78 73,2 —
 
Тази  таблица  е съставена  въз основа  на данни  от корекциите  на 
Харкинс  и Джордан . Тя е подобна  на таблицата  в стандарта  DIN 
53914 за вода  и водни  разтвори  (плътност  ρ = 1 g/cm  3 и се 
отнася  за пръстен  с размери  R = 9,55 mm ( среден  радиус  на 
пръстена ) и r = 0,185 mm ( радиус  на проводника  на пръстена ). 
Таблицата  предоставя  коригираните  стойности  на повърхно­  
стното  напрежение  за изпитвания , проведени  след  калибриране  
с тежести  или след  калибриране  с вода . 
Без предварително  калибриране  повърхностното  напрежение  
може  да се изчисли  по следната  формула : 
σ ¼ f Ü F 
4πR 
където : 
F = силата , измерена  с динамометър , в точката  на прекъсване  
на филма  
R = радиуса  на пръстена  
f = корекционния  коефициент  (1). 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  С РЕЗУЛТАТИТЕ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
По възможност  протоколът  с резултатите  от изпитването  трябва  
да включва  следната  информация : 
— използван  метод , 
— тип на използвания  разтвор , 
— точно  определение  на веществото  (вид и примеси ), 
— резултати  от изпитванията : повърхностно  напрежение  (отч­  
етено ) — включват  се показанията  при отделните  
измервания  и тяхната  средноаритметична  стойност , както  и 
коригираната  средна  стойност  (в която  са взети  под 
внимание  типът  на оборудването  и корекционната  таблица ), ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 58
 
— концентрация  на разтвора , 
— температура  на изпитването , 
— време  на престояване  на разтвора ; по-точно  времето  между  
приготвянето  и измерването  на разтвора , 
— описание  на зависимостта  на повърхностното  напрежение  от 
времето  след  прехвърлянето  на разтвора  в измервателния  
съд, 
— трябва  да се докладват  цялата  информация  и бележките  
върху  интерпретацията  на резултатите , особено  онези , 
които  са свързани  с примесите  и физичното  състояние  на 
веществата . 
3.2. АНАЛИЗИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Като  се има предвид , че повърхностното  напрежение  на водата  е 
72,75 mN/m при 20 o С, веществата  с повърхностно  напрежение , 
по-ниско  от 60 mN/m, определено  при условията  на този метод , 
трябва  да се разглеждат  като повърхностноактивни  вещества . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ОИСР , Paris, 1981, Test Guideline 115, решение  на Съвета  
C(81) 30 окончателен . 
(2) R. Weissberger ed.; Technique of Organic Chemistry, Physical 
Methods of Organic Chemistry, 3  rd ed., Interscience Publ., New 
York, 1959, Vol. I, Part I, Chapter XIV.  
(3) Pure Appl. Chem., 1976, vol. 48, 511.  
(4) Harkins, W. D., Jordan, H. F., J. Amer. Chem. Soc, 1930, 
vol. 52, 1751.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 59
 
А.6. РАЗТВОРИМОСТ  ВЪВ  ВОДА  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
105 на ОИСР  (ОИСР  TG 105) (1995 г.). Настоящият  метод  за изпитване  
е преработена  версия  на оригиналното  ОИСР  TG 105 (1995 г.). Няма  
съществена  разлика  между  настоящата  версия  и версията  от 1981 г. 
Променен  е главно  форматът . Преразглеждането  е извършено  въз 
основа  на метод  на ЕС за изпитване  „Разтворимост  във вода “ ( 1 ). 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
2. Разтворимостта  във вода  на дадено  вещество  може  значително  да се 
повлияе  от наличието  на примеси . Настоящият  метод  за изпитване  е 
насочен  към определяне  на разтворимостта  във вода  на чисти  вещества , 
които  са стабилни  във вода  и не са летливи . Преди  да се определи  
разтворимостта  във вода  е полезно  да съществува  налична  
предварителна  информация  за изпитваното  вещество , като например  
структурна  формула , парно  налягане , дисоциационна  константа  и 
хидролиза  като функция  на рН. 
3. В настоящия  метод  за изпитване  са описани  два метода  — методът  на 
елуиране  от колона  и методът  на стъкленицата , които  обхващат  
съответно  разтворимости  под и над 10  –2 g/l. Описано  е също  и 
просто  предварително  изпитване . То позволява  приблизителното  
определяне  на подходящото  количество  на пробата , което  да бъде  
използвано  при окончателното  изпитване , както  и времето , необходимо  
за постигането  на насищане . 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
4. Разтворимостта  във вода  на дадено  вещество  се определя  като масовата  
концентрация  на наситения  разтвор  на веществото  във вода  при дадена  
температура . 
5. Разтворимостта  във вода  се изразява  в маса  на разтвореното  вещество  
за обем  разтвор . Мерната  единица  в системата  SI е kg/m  3 , но може  
също  да се използва  и g/l. 
СРАВНИТЕЛНИ  ХИМИКАЛИ  
6. Не е необходимо  да се използват  сравнителни  химикали  при 
изследване  на изпитвано  вещество . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДИТЕ  
Условия  на изпитването  
7. За предпочитане  е изпитването  да се провежда  при 20 ± 0,5 °C. 
Избраната  температура  трябва  да се поддържа  постоянна  във всички  
относими  части  на оборудването . 
Предварително  изпитване  
8. Чрез  прилагане  на поетапна  процедура  се добавят  нарастващи  обеми  
вода  при стайна  температура  към приблизително  0,1 g от пробата  
(твърдите  изпитвани  вещества  трябва  да се привеждат  в прахообразно  
състояние ) в мерителен  цилиндър  със стъклена  запушалка  с вместимост  
10 ml. След  всяко  прибавяне  на дадено  количество  вода  сместа  се 
разклаща  в продължение  на 10 минути  и визуално  се проверява  за 
наличието  на неразтворени  частици  от пробата . Ако след прибавянето  
на 10 ml вода  пробата  или частици  от нея останат  неразтворени , опитът  
се продължава  в мерителен  цилиндър  с вместимост  100 ml. Приблизит­  
елната  разтворимост  е дадена  в таблица  1 по-долу  под онзи  обем  вода , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 60
 
при който  настъпва  пълното  разтваряне  на пробата . Когато  разт­  
воримостта  е малка  може  да е необходимо  продължително  време  за 
разтваряне  на дадено  изпитвано  вещество  и следва  да бъдат  предо­  
ставени  най-малко  24 часа. Ако след 24 часа изпитваното  вещество  е 
още не е разтворено  следва  да се предостави  повече  време  (до 96 часа) 
или да се направи  опит  за по-нататъшно  разреждане  с цел да се установи  
дали  следва  да се използва  методът  на елуиране  от колона  или методът  
на стъкленицата . 
Таблица  1 
ml вода  за 0,1 g разтворими  0,1 0,5 1 2 10 100 > 100 
Приблизителна  разт­  
воримост  в g/l > 1 000 1 000 до 
200 200 до 
100 100 до 
50 50 до 10 10 до 1 < 1  
Метод  на елуиране  от колона  
Принцип  
9. Настоящият  метод  се основава  на елуиране  на изпитваното  вещество  с 
вода  от микроколона , запълнена  с инертен  носител , предварително  
покрит  с излишък  от изпитваното  вещество  (2). Разтворимостта  във 
вода  се определя  като масовата  концентрация  на елуата  когато  
кривата  на същата  е достигнала  плато  като функция  от времето . 
Апаратура  
10. Апаратът  се състои  от микроколона  (фигура  1), поддържана  при 
постоянна  температура . Тя е свързана  или с рециркулационна  помпа  
(фигура  2), или с нивелиращ  съд (фигура  3). Микроколоната  съдържа  
инертен  носител , закрепен  на място  с малка  запушалка  от стъклена  
вата, която  служи  и за филтруване  на твърдите  частици . Материалите , 
които  могат  да се използват  като носители , са стъклени  перли , 
диатомит  или други  инертни  материали . 
11. Микроколоната , показана  на фигура  1, е подходяща  за постановката  с 
рециркулационна  помпа . Тя има входно  разширение , достатъчно  за пет 
обема  на колоната  (които  се изхвърлят  в началото  на опита ) и обема  на 
пет проби  (за анализ  по време  на опита ). Като  алтернатива , размерът  
може  да бъде  намален , ако към системата  може  да бъде  добавяна  вода  
по време  на опита , за да замести  първоначалните  пет обема , отстранени  
с примесите . Колоната  се свързва , посредством  направена  от инертен  
материал  тръбичка , с рециркулационната  помпа , с която  могат  да се 
подават  приблизително  25 ml/h. Рециркулационната  помпа  може  да 
бъде  например  перисталтична  или мембранна  помпа . Трябва  да се 
вземат  мерки  да не се допусне  замърсяване  и/или адсорбция  на 
веществото  от материала , от който  е направена  тръбичката . 
12. Схематично  подреждане  при използване  на нивелиращ  съд е показано  
на фигура  3. При това подреждане  микроколоната  е оборудвана  с едно­  
посочен  спирателен  кран . Връзката  към нивелиращия  съд се състои  от 
шарнир  от шлифовано  стъкло  и тръбичка , направена  от инертен  
материал . Обемната  скорост  на потока  от нивелиращия  съд следва  да 
бъде  приблизително  25 ml/h.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 61
 
Фигура  1
 
Размерите  са в mm  
A. Връзка  за шарнир  от шлифовано  стъкло  
B. Входно  разширение  
C. Вътрешна  част 5 
D. Външна  част 19 
E. Тапа  от стъклена  вата 
F. Спирателен  кран  
Фигура  2
 
A. Атмосферно  уравновесяване  
B. Дебитометьр  
C. Микроколона  
D. Термостатирана  циркулационна  помпа  
E. Рециркулационна  помпа  
F. Двупосочен  кран  за отбиране  на проби  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 62
 
Фигура  3
 
A. Нивелиращ  съд (например  колба  с обем  2,5 литра ) 
B. Колона  
C. Колектор  за фракциите  
D. Термостат  
E. Тефлонови  тръбички  
F. Шарнир  от шлифовано  стъкло  
G. Водна  линия  (между  термостата  и колоната , вътрешен  диаметър  
приблизително  8 mm)  
13. Приблизително  600 mg от носителя  се прехвърлят  в облодънна  колба  
от 50 ml. Подходящо  количество  от изпитваното  вещество  се разтваря  в 
летлив  разтворител  с квалификация  „чист  за анализ “ и подходяща  част 
от този разтвор  се прибавя  към носителя . Разтворителят  се изпарява  
напълно , например  с ротационен  изпарител , тъй като в противен  
случай , поради  разпределението  на повърхността , няма  да може  да 
бъде  постигнато  насищане  с вода  на носителя  през етапа  на 
елуирането . Натовареният  с веществото  носител  се оставя  да се 
просмуче  в продължение  на два часа в около  5 ml вода , след  което  
суспензията  се поставя  в микроколоната . Като  алтернатива , сухият  
носител , натоварен  с веществото , може  да се насипе  в напълнената  с 
вода  микроколона , като се дават  два часа за уравновесяване . 
14. Натоварването  на носителя  може  да създаде  проблеми , водещи  до 
погрешни  резултати , например  когато  изпитваното  вещество  се отлага  
под формата  на масло . Тези  проблеми  трябва  да бъдат  изследвани  
опитно  и подробностите  трябва  да бъдат  докладвани . 
Процедура  с използване  на рециркулационна  помпа  
15. Потокът  през колоната  се стартира . Препоръчително  е да се използва  
обемна  скорост  на потока  от приблизително  25 ml/h, съответстваща  на 
10 обема  на описаната  тук колона  за час. Първите  най-малко  пет 
колонни  обема  се изхвърлят , за да се отстранят  разтворимите  във 
вода  примеси . След  това помпата  се оставя  да работи , докато  се 
установи  равновесие , като настъпването  на равновесието  се определя  
от пет последователни  проби , чиито  концентрации , взети  в произволен  
ред, не трябва  да се различават  една  от друга  с повече  от ± 30 %. 
Отбирането  на тези проби  трябва  да бъде  разделено  от времеви  
интервали , съответстващи  най-малко  на времето , необходимо  за 
преминаването  на 10 колонни  обема . В зависимост  от използвания  
метод  за анализ , може  да е препоръчително  да се установи  крива  
концентрация /време , за да се покаже , че равновесието  е достигнато . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 63
 
Процедура  с използване  на нивелиращ  съд 
16. Последователни  фракции  от елуата  се събират  и анализират  по 
избрания  метод . Фракциите  от средата  на интервала  за елуиране , 
където  концентрациите  са постоянни  в рамките  на ± 30 % при най- 
малко  пет последователни  фракции , се използват  за определяне  на 
разтворимостта . 
17. Предпочитаният  елуент  е бидестилирана  вода . Може  да се използва  
също  и дейонизирана  вода  със специфично  съпротивление  над 10 
Mohm.cm и общо  съдържание  на органичен  въглерод  под 0,01 %.  
18. По двете  процедури  се извършва  втори  опит , при който  обемната  
скорост  на потока  е равна  на половината  от обемната  скорост  при 
първия  опит . Ако резултатите  от двата  опита  са близки , изпитването  
се счита  за успешно . Ако при по-малка  обемна  скорост  на потока  се 
получи  по-голяма  разтворимост , намаляването  на обемната  скорост  на 
потока  наполовина  продължава , докато  при два последователни  опита  
се получи  една  и съща  разтворимост . 
19. По двете  процедури  фракциите  трябва  да се проверяват  за наличието  
на колоидни  частици  чрез изследване  за Тиндалов  ефект . Наличието  на 
такива  частици  прави  изпитването  невалидно  и изпитването  трябва  да 
се повтори , след  като се подобри  филтруването  от колоната . 
20. рН на всяка  проба  трябва  да се измери , за предпочитане  чрез 
използване  на специални  индикаторни  ленти . 
Метод  на стъкленицата  
Принцип  
21. Изпитваното  вещество  (твърдите  вещества  трябва  да се привеждат  в 
прахообразно  състояние ) се разтваря  във вода  при температура , 
малко  по-висока  от температурата  на изпитването . Когато  се достигне  
насищането , сместа  се охлажда  и се държи  при температурата  на 
изпитването . Като  алтернатива , измерването  може  да се проведе  и 
направо  при температурата  на изпитването , ако с помощта  на 
подходящи  проби  се докаже , че е достигнато  равновесие  на 
насищане . След  това с подходящ  метод  за анализ  се определя  
масовата  концентрация  на изпитваното  вещество  във водния  разтвор , 
който  не бива  да съдържа  неразтворени  частици  (3). 
Апаратура  
22. Необходими  са следните  материали : 
— обичайните  лабораторни  прибори  и стъклария , 
— уред  за разбъркване  на разтворите  при контролирана  постоянна  
температура , 
— центрофуга , ако се изисква  за емулсии  (за предпочитане  термост­  
атирана ), и 
— аналитично  оборудване . 
Процедура  
23. Прогнозното  количество  изпитвано  вещество , необходимо  за достигане  
на насищане  на желания  обем  вода , се определя  при предварителното  
изпитване . Около  пет пъти  от това количество  се претеглят  и се 
поставят  поотделно  в три стъклени  съда , снабдени  със стъклени  
запушалки  (например  центрофужни  епруветки , колби ). Даден  обем  
вода , определен  в зависимост  от метода  за анализ  и диапазона  на разт­  
воримостта , се добавя  към всеки  съд. След  това съдовете  се затварят  
плътно  и се разклащат  при температура  30 °C. Следва  да се използват  
клатачни  машини  или бъркалки , които  могат  да работят  при постоянна  
температура , например  магнитна  бъркалка  в термостатирана  водна  
баня . След  един  ден се извършва  уравновесяване  на един  от съдовете  
в продължение  на 24 часа при температурата  на изпитването , като 
същият  периодично  се разклаща . След  това съдържанието  на съда  се 
центрофугира  при температурата  на изпитването  и концентрацията  на 
изпитваното  вещество  в бистрата  водна  фаза  се определя  с подходящ  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 64
 
метод  за анализ . Другите  две стъкленици  се обработват  по подобен  
начин  след  първоначално  уравновесяване  при 30 °C в продължение  
съответно  на два и три дни. Ако концентрациите , измерени  най- 
малко  в двата  последни  съда , не се различават  с повече  от 15 %, 
изпитването  се счита  за задоволително . Ако резултатите  от съдове  1, 
2 и 3 показват  тенденция  към нарастване  на получените  стойности  за 
разтворимостта , цялото  изпитване  трябва  да се повтори  при по-продъ­  
лжителни  периоди  за уравновесяване . 
24. Изпитването  може  да се извърши  също  без предварителна  инкубация  
при 30 °C. За да се определи  скоростта , с която  се установява  равнов­  
есието  на насищане , се вземат  проби  до преустановяване  на влиянието  
на времето  на разбъркване  върху  измерената  концентрация . 
25. рН на всяка  проба  трябва  да се измери , за предпочитане  чрез 
използване  на специални  индикаторни  ленти . 
Аналитични  определяния  
26. Предпочита  се специфичен  за дадено  вещество  метод  за анализ , тъй 
като малки  количества  от разтворими  примеси  могат  да доведат  до 
големи  грешки  в измерената  величина  на разтворимостта . Примери  за 
такива  методи  са: газова  или течна  хроматография , титриметрия , 
фотометрия , волтамперометрия . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
Метод  на елуиране  от колона  
27. За всеки  опит  следва  да бъдат  изчислени  средната  стойност  и 
стандартното  отклонение  от най-малко  пет последователни  проби , 
взети  в платото  на насищане . Средните  стойности , получени  при две 
изпитвания  с различни  потоци , не следва  да се различават  с повече  от 
30 %.  
Метод  на стъкленицата  
28. Индивидуалните  резултати  за всеки  от трите  съда , които  не трябва  да 
се различават  с повече  от 15 %, се усредняват . 
Доклад  от изпитването  
Метод  на елуиране  от колона  
29. Докладът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  информация : 
— резултатите  от предварителното  изпитване , 
— идентичността  на химикала  и примесите  (етап на предварително  
пречистване , ако има такъв ), 
— концентрациите , обемните  скорости  на потока  и рН за всяка  проба , 
— средните  стойности  и стандартните  отклонения  на най-малко  пет 
проби  от платото  на насищане  при всеки  опит , 
— средната  стойност  от най-малко  два последователни  опита , 
— температурата  на водата  по време  на процеса  на насищане , 
— методът  на анализ , 
— природата  на носителя , 
— натоварването  на носителя , 
— използваният  разтворител , 
— данните  за евентуална  химична  неустойчивост  на веществото  в 
процеса  на изпитването , 
— всякаква  информация , относима  към интерпретирането  на резулт­  
атите , особено  по отношение  на примесите  и агрегатното  състояние  
на веществото . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 65
 
Метод  на стъкленицата  
30. Докладът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  информация : 
— резултатите  от предварителното  изпитване , 
— идентичността  на химикала  и примесите  (етап на предварително  
пречистване , ако има такъв ), 
— резултатите  от индивидуалните  методи  за анализ , както  и средната  
стойност  в случаите , когато  за всеки  съд е получена  повече  от една  
стойност , 
— рН на всяка  проба , 
— средната  стойност  от резултатите  за различни  съдове , които  са били  
близки , 
— температурата  на изпитването , 
— методът  за анализ , 
— данните  за всякаква  химична  неустойчивост  на веществото  в 
процеса  на изпитването , 
— всякаква  информация , относима  към интерпретирането  на резулт­  
атите , особено  по отношение  на примесите  и агрегатното  състояние  
на изпитваното  вещество . 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) Директива  92/69/ЕИО  на Комисията  от 31 юли 1992 година  относно  
седемнадесетото  адаптиране  към техническия  прогрес  на Директива  
67/548/ЕИО  на Съвета  за сближаването  на законовите , подзаконовите  
и административните  разпоредби  относно  класификацията , опаковането  
и етикетирането  на опасни  вещества , ОВ L 383, 29.12.1992 г., стр. 113.  
(2) NF T 20-045 (AFNOR) (September 1985). Chemical products for industrial 
use -Determination of water solubility of solids and liquids with low solu ­
bility - Column elution method  
(3) NF T 20-046 (AFNOR) (September 1985). Chemical products for industrial 
use - Determination of water solubility of solids and liquids with high solu ­
bility - Flask method  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 66
 
А.8. КОЕФИЦИЕНТ  НА РАЗПРЕДЕЛЕНИЕ  
1. МЕТОД  
Методът  на „разклащането  в стъкленица “ се основава  на Ръко­  
водството  за провеждане  на изпитвания  на ОИСР  (1). 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
За провеждането  на това изпитване  е полезно  да има 
предварителна  информация  за структурната  формула , дисоциац­  
ионната  константа , разтворимостта  във вода , хидролизата , разт­  
воримостта  в n-октанол  и повърхностното  напрежение  на 
веществото . 
Изпитванията  върху  вещества , които  могат  да се йонизират , 
трябва  да се провеждат  в нейонната  им форма  (свободна  
киселина  или свободна  база). Тя се получава  с помощта  на 
подходящ  буфер  с рН, най-малко  една  единица  по-ниско  
(свободна  киселина ) или по-високо  (свободна  база) от рК на 
веществото . 
Този  изпитвателен  метод  обхваща  две отделни  процедури : метод  
на разклащането  в стъкленица  и високочувствителна  течна  
хроматография  (HPLC). Първият  метод  се прилага , когато  стой­  
ността  на log P  ow (вижте  по-долу  при определенията ) попада  в 
областта  от — 2 до 4, а вторият  — в областта  от 0 до 6. Преди  
да се проведе  някоя  от двете  експериментални  процедури , 
трябва  да се направи  предварителна  оценка  на коефициента  на 
разпределение . 
Методът  на разклащането  в стъкленица  се прилага  само  за 
абсолютно  чисти  вещества , разтворими  във вода  и n-октанол . 
Той не може  да се използва  за повърхностноактивни  вещества  
(за които  трябва  да се предостави  изчислена  стойност  или 
приблизителна  оценка , основана  на разтворимостите  им в n- 
октанол  и във вода , получени  поотделно ). 
Методът  на HPLC не може  да се прилага  за силни  киселини  и 
основи , метални  комплекси , повърхностноактивни  материали  
или вещества , които  реагират  с елуиращия  агент . За такива  
вещества  трябва  да се предостави  изчислена  стойност  или 
приблизителна  оценка , основана  на разтворимостите  им в n- 
октанол  и във вода , получени  поотделно . 
Методът  на HPLC е по-малко  чувствителен  към присъствието  на 
примеси  в изпитваното  вещество , отколкото  методът  на разкл­  
ащането  в стъкленица . Независимо  от това и при този метод  в 
някои  случаи  присъствието  на примеси  може  да доведе  до 
трудно  интерпретиране  на резултатите , защото  определянето  
на пиковете  става  несигурно . За смеси , които  дават  недобро  
разделяне  на пиковете , трябва  да се посочват  горната  и 
долната  граница  на log P.  
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Коефициентът  на разпределение  (Р) се дефинира  като съотнош­  
ението  между  равновесните  концентрации  (с i ) на разтвореното  
вещество  в двуфазна  система , която  се състои  от два практ­  
ически  несмесващи  се разтворителя , в случая  n-октанол  и вода : 
p ow ¼ c n Ä октанол  
c вода 
Следователно  коефициентът  на разпределение  (Р) представлява  
съотношение  между  две концентрации  и обикновено  се дава във 
формата  на логаритъм  при основа  10 (log P).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 67
 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Метод  на разклащането  в стъкленица  
Когато  се изпитва  ново  вещество , не във всички  случаи  е необ­  
ходимо  да се използват  вещества  за сравнение . Преди  всичко  те 
трябва  да служат  за периодична  проверка  на действието  на метода  
и да позволяват  сравнение  с резултатите , получени  по други  методи . 
HPLC метод  
За да се установи  съотношението , в което  се намират  данните  за 
дадено  вещество , получени  по метода  на HPLC, и неговата  Р 
стойност , трябва  да се начертае  калибрационна  графика  на log Р 
спрямо  хроматографските  данни . За целта  се използват  най- 
малко  6 точки , получени  от сравнителни  вещества . Подборът  
на подходящи  сравнителни  вещества  остава  на грижата  на 
потребителя . Когато  е възможно , поне  едно  съединение  за 
сравнение  трябва  да има P ow , по-високо  от това на изпитваното  
вещество , а друго  съединение  за сравнение  да има P ow , по-ниско  
от това на изпитваното  вещество . За стойности  на log P по- 
малки  от 4 калибрирането  трябва  да се основава  на данни , 
получени  по метода  на разклащането  в стъкленица . За 
стойности  на log P по-големи  от 4 калибрирането  трябва  да се 
базира  на утвърдени  литературни  данни , ако те се съгласуват  с 
изчислените  стойности . По-висока  точност  може  да се постигне , 
ако се изберат  сравнителни  вещества , подобни  по структура  на 
изпитваното  вещество . 
В литературните  източници  (2) и (3) могат  да се намерят  
обширни  списъци  със стойностите  на log P  ow за много  групи  
от химични  вещества . Ако не могат  да се открият  данни  за 
коефициентите  на разпределение  на вещества , които  са 
подобни  по структура  на изпитваното , може  да се направи  по- 
общо  калибриране , като се използват  други  съединения  за 
сравнение . 
В допълнение  2 е даден  списък  от вещества , които  се 
препоръчват  като сравнителни , а също  и техните  P ow стойности . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
1.4.1.  Метод  на разклащането  в стъкленица  
За да се намери  коефициентът  на разпределение , трябва  да се 
достигне  равновесие  между  всички  взаимодействащи  
компоненти  на системата  и да се определят  концентрациите  на 
разтвореното  вещество  в двете  фази . Изучаването  на 
литературата  по този въпрос  показва , че за решаването  на 
проблема  — тоест  смесването  на двете  фази  и последващото  
им разделяне  с цел определяне  на равновесната  концентрация  
на изпитваното  вещество  — могат  да се използват  няколко  
различни  техники . 
1.4.2.  Метод  на HPLC  
Изпитването  с HPLC ce провежда  в аналитични  колонки  с 
търговски  пълнител , състоящ  се от дълги  въглеводородни  
вериги  (например  С 8 , C  18 ), химически  свързани  към силициев  
диоксид . Химичните  вещества , инжектирани  в такава  колонка , 
се придвижват  по дължината  ѝ с различна  скорост  поради  разл­  
ичната  степен  на разпределение  между  подвижната  фаза  и 
неподвижната  въглеводородна  фаза . Смесите  от химични  
вещества  се елуират  по реда  на тяхната  хидрофобност , като 
разтворимите  във вода  вещества  се елуират  първи , а разт­  
воримите  в мазнини  вещества  се елуират  последни  в съотв­  
етствие  с техните  коефициенти  на разпределение  между  въгле­  
водородната  и водната  фаза . Това  позволява  да се установи  
връзка  между  времето  на задържане  в такава  колонка  (с 
обърната  фаза ) и коефициента  на разпределение  n-октанол /вода . 
Коефициентът  на разпределение  се извежда  от коефициента  на 
пропускане  „k“, който  се дава с израза : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 68
 
k ¼ t r Ä t o 
t o 
където  t r = времето  на задържане  на изпитваното  вещество  в 
колоната , a t  0 = средното  време , необходимо  на една  молекула  
от разтворителя  да премине  през колоната  (мъртво  време ). 
Не е необходимо  да се прилагат  количествени  аналитични  
методи . Нужно  е само  да се определят  времената  на елуиране . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
1.5.1.  Повторяемост  
Метод  на разклащането  в стъкленица  
За да се постигне  точно  определяне  на коефициента  на 
разпределение , трябва  да се направят  по две изпитвания  при 
три различни  експериментални  условия , които  могат  да се 
задават , като се променя  количеството  на изпитваното  
вещество , както  и съотношенията  между  обемите  на разтворит­  
елите . Определените  стойности  за коефициента  на 
разпределение , изразени  в десетични  логаритми , трябва  да 
попадат  в областта  ± 0,3 логаритмични  единици . 
Метод  на HPLC  
За да се увеличи  достоверността  на резултатите , трябва  да се 
правят  по две изпитвания . Стойностите  на log P, получени  при 
отделните  изпитвания , трябва  да попадат  в областта  ± 0,1 
логаритмични  единици . 
1.5.2.  Чувствителност  
Метод  на разклащането  в стъкленица  
Областта , в която  може  да се използва  методът , се определя  от 
ограниченията  на аналитичната  процедура . Тя трябва  да 
позволява  оценка  на стойностите  на log P  ow в областта  от – 2 
до 4 (в някои  случаи , като се подберат  условията , тази област  
може  да се разшири  до log P  ow = 5), като концентрациите  на 
разтвореното  вещество  във всяка  от двете  фази  не надвишават  
0,01 мола  на литър . 
Метод  на HPLC  
Методът  на HPLC позволява  коефициентите  на разпределение  
да се определят  в областта  на log P  ow от 0 до 6. 
Обикновено  коефициентът  на разпределение  на едно  вещество  
може  да се прецени  с точност  до ± 1 логаритмична  единица  от 
стойността , получена  по метода  с разклащане  на стъкленица . 
Типичните  корелации  могат  да се намерят  в литературните  
източници  (4) (5) (6) (7) (8). По-висока  точност  се постига , 
когато  корелационните  графики  се базират  на подобни  по 
структура  съединения  (9). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 69
 
1.5.3.  Специфичност  
Метод  на разклащането  в стъкленица  
Законът  на Нернст  за разпределението  се отнася  само  за 
разредени  разтвори  при постоянна  температура , налягане  и рН. 
Той се прилага  само  за чисти  вещества , разпределени  между  два 
чисти  разтворителя . Резултатите  могат  да се повлияят , ако се 
окаже , че в едната  или и в двете  фази  има няколко  различни  
разтворени  вещества . 
Дисоциацията  или асоциацията  на разтворените  молекули  води  
до отклонения  от Закона  на Нернст  за разпределението . Тези  
отклонения  се откриват  по това, че коефициентът  на 
разпределение  започва  да зависи  от концентрацията  на разтвора . 
Този  метод  не може  да се прилага , без да се нанасят  корекции  за 
вещества , които  могат  да преминават  в йонно  състояние , поради  
многобройните  равновесия , които  се установяват  в системата . За 
такива  вещества  вместо  вода  могат  да се използват  буферни  
разтвори ; рН на буфера  трябва  да се различава  от рК а на 
веществото  с поне  една  рН единица  и винаги  трябва  да се 
внимава  дали  това рН е приложимо  за дадената  среда . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Предварителна  оценка  на коефициента  на разпределение  
За предпочитане  е коефициентът  на разпределение  да се намери  
чрез изчислителни  методи  (вж. допълнение  1) или когато  е 
възможно , от съотношението  на разтворимостите  на 
изпитваното  вещество  в чистите  разтворители  (10).  
1.6.2.  Метод  на разклащането  в стъкленица  
1.6.2.1.  Подготовка  
n-октанол : определянето  на коефициента  на разпределение  
трябва  да се извършва  в реактив  с висока  аналитична  степен  
на чистота . 
Вода : трябва  да се използва  дестилирана  или бидестилирана  в 
стъклен  или кварцов  съд вода . Ако е оправдано , за вещества , 
които  имат  йонна  форма , вместо  вода  се използват  буферни  
разтвори . 
Забележка : 
Не бива  да се използва  вода , взета  направо  от йонообменник . 
1.6.2.1.1. П р е д в а р и т е л н о н а с и щ а н е н а р а з т в о р и т е л и т е 
Преди  определянето  на коефициента  на разпределение  двете  
фази  на системата  от разтворители  трябва  взаимно  да се 
наситят , като се разклащат  при температурата  на изпитването . 
За да се направи  това, е добре  в два големи  лабораторни  съда  да 
се поставят  съответно  n-октанол  с висока  степен  на чистота  и 
вода , към всеки  съд да се добави  достатъчно  количество  от 
другия  разтворител  и съдовете  да се разклащат  в продължение  
на 24 часа на механична  клатачка . След  това те се оставят  да 
престоят  достатъчно  дълго , така че фазите  да се разделят  и да се 
постигне  състоянието  на насищане . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 70
 
1.6.2.1.2. П о д г о т о в к а з а и з п и т в а н е т о 
Целият  обем  на двуфазната  система  трябва  да запълни  почти  
изцяло  измервателния  съд. Това  ще помогне  да се избегне  
загубата  на материал  чрез изпарение . Съотношението  на 
обемите  на разтворителите  и количеството  вещество , които  ще 
се използват  при изпитването , се определят  от следните  
фактори : 
— предварителната  оценка  на коефициента  на разпределение  
(вж. по-горе), 
— минималното  количество  от изпитваното  вещество , необ­  
ходимо  за провеждането  на аналитичната  процедура , и 
— ограничението  за максималната  концентрация  във всяка  от 
фазите , което  е 0,01 мола  на литър . 
Извършват  се три изпитвания . При първото  се използва  изчис­  
леното  обемно  съотношение  на n-октанола  към водата ; при 
второто  това съотношение  се разделя  на две; при третото  отнош­  
ението  се умножава  по две (например  1:1, 1:2, 2:1).  
1.6.2.1.3. И з п и т в а н о в е щ е с т в о 
Приготвя  се сток-разтвор  в n-октанола , наситен  с вода . Конце­  
нтрацията  на този разтвор  трябва  да се определи  с висока  
точност , преди  той да се използва  за определяне  на коефициента  
на разпределение . Разтворът  се съхранява  при условия , 
осигуряващи  стабилността  му. 
1.6.2.2.  Условия  на изпитването  
Температурата  на изпитването  трябва  да се поддържа  постоянна  
(± 1  o С) и да бъде  в интервала  от 20 до 25  o С. 
1.6.2.3.  Процедура  на изпитването  
1.6.2.3.1. У с т а н о в я в а н е н а р а в н о в е с и е т о н а 
р а з п р е д е л е н и е 
За всяко  изпитване  при дадени  условия  трябва  да се приготвят  
по два изпитвателни  съда , съдържащи  необходимото  точно  
премерено  количество  от двата  разтворителя , заедно  с нужното  
количество  сток-разтвор . 
Фазите  на n-октанола  трябва  да се премерят  по обем . Измерват­  
елните  съдове  се поставят  в подходяща  клатачна  машина  или се 
разклащат  на ръка . Ако се използва  центрофужна  епруветка , 
препоръчително  е тя да се завърта  бързо  на 180  o около  
напречната  ѝ ос, така че задържаният  въздух  да преминава  
през двете  фази . Опитът  е показал , че 50 такива  завъртания  
обикновено  са достатъчни  да се достигне  равновесието  на 
насищане . За по-голяма  сигурност  е добре  да се направят  100 
завъртания  за пет минути . 
1.6.2.3.2. Р а з д е л я н е н а ф а з и т е 
Когато  е необходимо , разделянето  на фазите  се постига , като 
сместа  се центрофугира . Това  се прави  на лабораторна  
центрофуга , в която  се поддържа  стайна  температура , или ако 
се използва  центрофуга  без температурен  контрол , 
центрофужните  епруветки  трябва  да се темперират  при 
температурата  на изпитването  поне  един  час преди  анализа . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 71
 
1.6.2.4.  Анализ  
За да се определи  коефициентът  на разпределение , е необходимо  
да се измери  концентрацията  на изпитваното  вещество  във всяка  
от фазите . Това  може  да се направи , като се вземе  аликвотна  
част от отделните  фази  във всяка  епруветка  при всяко  измерване  
и тя се анализира  с помощта  на избраната  процедура . Трябва  да 
се изчисли  общото  количество  вещество  в двете  фази  и да се 
сравни  с първоначално  въведеното  количество . 
Пробата  от водната  фаза  трябва  да се вземе  така, че рискът  от 
замърсяване  със следи  от n-октанол  да е минимален . За целта  
може  да се използва  стъклена  спринцовка  с подвижна  игла . 
Първоначално  спринцовката  се запълва  частично  с въздух . 
Въздухът  внимателно  се изпуска , докато  иглата  преминава  
през слоя  от n-октанол . Със спринцовката  се поема  необ­  
ходимият  обем  от водната  фаза . След  това тя бързо  се 
изважда  от разтвора  и иглата  се отстранява . Тогава  
съдържанието  на спринцовката  може  да се използва  като 
проба  от водната  фаза . Концентрацията  в двете  разделени  фази  
се определя  за предпочитане  по метод , специфичен  за 
веществото . Примери  за подходящи  аналитични  методи  са 
следните : 
— фотометрични  методи , 
— газова  хроматография , 
— високочувствителна  течна  хроматография . 
1.6.3.  Метод  на HPLC  
1.6.3.1.  Подготовка  
Апаратура  
Необходим  е течен  хроматограф , снабден  с помпа  за равномерно  
подаване  на течности  и подходящо  отчитащо  устройство . 
Препоръчва  се да се използва  инжекционен  клапан  с 
инжекционни  скоби . Присъствието  на полярни  групи  в 
неподвижната  фаза  може  значително  да влоши  действието  на 
HPLC-колоната . Затова  неподвижната  фаза  трябва  да има 
минимален  процент  от полярни  групи  (11). Могат  да се 
използват  търговските  пълнители  от микрочастици  за обърнати  
фази  или готови  напълнени  колони . Между  инжекционната  
система  и аналитичната  колона  може  да се постави  предпазна  
колона . 
Подвижна  фаза  
Като  елуиращи  разтворители  (които  се дегазират  преди  
употреба ) се използват  метанол  и вода  със степени  на чистота  
за колонна  хроматография . Прилага  се изократно  елуиране . 
Съотношенията  метанол /вода  трябва  да предвиждат  миним­  
алното  съдържание  на вода  да бъде  25 %. Обикновено  сместа  
метанол -вода  3:1 (v/v) е подходяща  за елуиране  на съединения  с 
log P = 6 в рамките  на един  час при скорост  на потока  = 
1 ml/min. За вещества  с по-високи  стойности  на log P може  да 
се наложи  намаляване  на времето  за елуиране  (също  и на 
сравнителните  вещества ), като се намали  полярността  на 
подвижната  фаза  или дължината  на колоната . 
Веществата  с много  ниска  разтворимост  в n-октанол  често  дават  
необичайно  ниски  стойности  на log P  ow по метода  на HPLC; 
пиковете  на тези вещества  понякога  се появяват  с фронта  на 
разтворителя . Това  вероятно  се дължи  на факта , че процесът  
на разпределение  е твърде  бавен , за да се достигне  равновесие  
за времето , което  обикновено  се предвижда  за разделянето  чрез 
HPLC. Възможно  е, като се намали  скоростта  на потока  и/или 
съотношението  метанол /вода , да се достигне  до получаването  на 
достоверна  величина . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 72
 
Както  изпитваните , така и сравнителните  вещества  трябва  да са 
разтворими  в подвижната  фаза  в концентрации , достатъчни  да 
позволят  изпитването  им. Използването  на добавки  към сместа  
от метанол  и вода  се разрешава  само  в изключителни  случаи , 
тъй като те променят  свойствата  на колоната . За получаването  
на хроматограми  с добавки  задължително  се използва  отделна  
колона  от същия  тип. Ако сместа  метанол -вода  не е подходяща , 
може  да се използва  смес  от друг  органичен  разтворител  и вода , 
например  етанол -вода  или ацетонитрил -вода . 
Стойността  на рН на елуиращия  агент  е важна  за съединенията , 
които  могат  да преминават  в йонна  форма . Тя трябва  да бъде  в 
работната  рН-област  на колоната , която  обикновено  е между  2 и 
8. Препоръчва  се използването  на буфери . Трябва  да се внимава  
да се избегне  утаяването  на соли  и замърсяването  на колоната , 
което  може  да се получи  при някои  смеси  органичен  
разтворител /буферен  разтвор . Измерванията  с HPLC с 
неподвижна  фаза  на базата  на силициев  диоксид  при рН над 8 
не се препоръчват , тъй като употребата  на алкална  подвижна  
фаза  може  да доведе  до бързо  влошаване  на качествата  на 
колоната . 
Разтворени  вещества  
Сравнителните  вещества  трябва  да бъдат  с възможно  най-голяма  
степен  на чистота . Ако е възможно , веществата , които  ще се 
изпитват , и тези, които  ще се използват  за калибриране , се 
разтварят  в подвижната  фаза . 
Условия  на измерването  
Температурата  по време  на измерването  не бива  да се променя  с 
повече  от ± 2 K.  
1.6.3.2.  Измерване  
Изчисляване  на мъртвото  време  t 0 
Мъртвото  време  t 0 може  да определи , като се използва  или 
хомоложна  серия  (например  n-алкилметил  кетони ), или 
органични  съединения , които  не се задържат  (например  
тиоуреа  или формамид ). С помощта  на хомоложна  серия , 
мъртвото  време  t 0 ce изчислява , като поредица  от най-малко  
седем  члена  на хомоложния  ред се инжектира  в колоната  и се 
определят  съответните  времена  на задържане . Времената  на 
задържане  t r ( nc+1 ) ce нанасят  на графика  като функция  на t r ( nc ), 
a отрязъкът  „а“ и наклонът  „b“ ce определят  по регресионното  
уравнение : 
t r(nc + 1) = a + b t  r(nc) 
където  n с = броя  въглеродни  атоми . Тогава  мъртвото  време  се 
дава с: 
t o = a/(1 - b)  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 73
 
Калибрационна  графика  
Следващата  стъпка  е да се построят  корелационни  криви  на log 
k към log p за подходящи  сравнителни  вещества . На практика  
серия  от 5 до 10 сравнителни  вещества , чийто  log p е близо  до 
очакваната  област , се инжектират  едновременно  и времената  им 
на задържане  се определят  за предпочитане  на записващ  
интегратор , свързан  към измерителната  системата . Съответните  
логаритми  от коефициента  на пропускане , log k, се изчисляват  и 
нанасят  като функция  от log p, определен  по метода  на разкл­  
ащането  в стъкленица . Калибрирането  се прави  през равномерни  
интервали  поне  веднъж  дневно , така че да се отчитат  
възможните  изменения  в работата  на колоната . 
Определяне  на коефициента  на пропускане  на изпитваното  
вещество  
Изпитваното  вещество  се инжектира  в колоната  с колкото  е 
възможно  по-малко  количество  от подвижната  фаза . Определя  
се времето  на задържане  (два пъти ), което  позволява  да се 
изчисли  коефициентът  на пропускане  „k“. Коефициентът  на 
разпределение  на изпитваното  вещество  може  да се получи  от 
корелационната  графика  на сравнителните  вещества . За много  
ниски  или много  високи  коефициенти  на разпределение  се 
налага  да се извърши  екстраполация . В тези случаи  трябва  да 
се внимава  за границите  на достоверност  на регресионната  
права . 
2. ДАННИ  
Метод  на разклащането  в стъкленица  
Надеждността  на определените  стойности  на Р може  да се 
провери , като се сравнят  средните  стойности  от двукратните  
определения  и средната  стойност , получена  от целия  опит . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  с резултатите  трябва  по възможност  да включва  
следната  информация : 
— точното  описание  на веществото  (вид и примеси ), 
— когато  гореспоменатите  методи  не могат  да се приложат  
(например  при повърхностноактивни  вещества ), трябва  да 
се представи  стойност , изчислена  посредством  разтворим­  
остите  в n-октанол  и във вода , намерени  поотделно , 
— цялата  информация  и бележките  относно  интерпретирането  
на резултатите , особено  онези , свързани  с примесите  и 
физичното  състояние  на веществото . 
За метода  на разклащането  в стъкленица : 
— резултатите  от предварителните  изпитвания , ако има такива , 
— температурата  на изпитването , 
— данните  за аналитичната  процедура , с която  са определяни  
концентрациите , 
— времето  и скоростта  на центрофугиране , ако е провеждано  
такова , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 74
 
— намерените  концентрации  в двете  фази  при всяко  измерване  
(това означава , че се представят  общо  12 концентрации ), 
— теглото  на изпитваното  вещество , обемът  на отделните  фази  
във всеки  от измервателните  съдове  и изчисленото  общо  
количество  изпитвано  вещество , което  присъства  във 
фазите  след  достигането  на равновесие , 
— изчислените  стойности  на коефициента  на разпределение  (Р) 
и тяхната  средна  стойност  за отделните  изпитвания , 
проведени  при дадени  условия , както  и средната  стойност  
за всички  опити . Ако има предположение , че коефициентът  
на разпределение  зависи  от концентрацията , това също  
трябва  да се отбележи  в протокола , 
— съобщава  се стандартното  отклонение  на индивидуалните  Р 
стойности  от средната  стойност , 
— средната  стойност  на Р от всички  изпитвания  трябва  да се 
изрази  и като десетичен  логаритъм , 
— изчисленото  теоретично  P ow , когато  тази величина  е била  
определена  или когато  измерената  стойност  е > 10  4 , 
— рН на използваната  вода , както  и това на водната  фаза  по 
време  на изпитването , 
— ако са използвани  буфери , трябва  да се даде  обосновка  защо  
вместо  вода  е използван  буфер , неговият  състав , конце­  
нтрацията  и рН, рН на водната  фаза  преди  и след  
изпитването . 
За метода  на HPLC:  
— резултатите  от предварителните  изпитвания , ако има такива , 
— изпитваните  и сравнителните  вещества  и тяхната  степен  на 
чистота , 
— температурната  област  на изпитванията , 
— рН, при което  са правени  изпитванията , 
— детайлно  описание  на аналитичната  и предпазната  колона , 
подвижната  фаза  и средствата , с които  са провеждани  
изпитванията , 
— данните  за времето  на задържане  и литературни  стойности  
на log P на сравнителните  вещества , използвани  за 
калибриране , 
— данните  за направената  регресионна  права  (log k към log P),  
— данните  за средното  време  на задържане  и за 
интерполираната  log P стойност  на изпитваното  съединение , 
— описанието  на оборудването  и условията  на работа , 
— профилите  на елуирането , 
— количествата  на изпитваното  и на сравнителните  вещества , 
въведени  в колоната , 
— мъртвото  време  и как е измерено . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 75
 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ОИСР , Paris, 1981, Test Guideline 107, решение  на Съвета  
C(18) 30 окончателен . 
(2) C. Hansch and A. J. Leo, Substituent Constants for Correlation 
Analysis in Chemistry and Biology, John Wiley, New York, 1979.
 
(3) Log P and Parameter Database, A tool for the quantitative 
prediction of bioactivity (C. Hansch, chairman, A. J. Leo, dir.) — Available from Pomona College Medical Chemistry Project, 1982, Pomona College, Claremont, California 91711.
 
(4) L. Renberg, G. Sundstroem and K. Sundh-Nygaerd, 
Chemosphere, 1980, vol. 80, 683.  
(5) H. Ellgehausen, C. D'Hondt and R. Fuerer, Pestic. Sci., 1981, 
vol. 12, 219.  
(6) B. McDuffie, Chemosphere, 1981, vol. 10, 73.  
(7) W. E. Hammers et al., J. Chromatogr., 1982, vol. 247, 1.  
(8) J. E. Haky and A. M. Young, J. Liq. Chromat., 1984, vol. 7, 
675. 
(9) S. Fujisava and E. Masuhara, J. Biomed. Mat. Res., 1981, vol. 
15, 787.  
(10) O. Jubermann, Verteilen und Extrahieren, in Methoden der 
Organischen Chemie (Houben Weyl), Allgemeine Laboratori ­
umpraxis (edited by E. Muller), Georg Thieme Verlag, Stuttgart, 1958, Band I/1, 223-339.
 
(11) R.F. Rekker and H. M. de Kort, Euro. J. Med. Chem., 1979, 
vol. 14, 479.  
(12) A. Leo, C. Hansch and D. Elkins, Partition coefficients and 
their uses. Chem. Rev., 1971, vol. 71, 525.  
(13) R. F. Rekker, The Hydrophobic Fragmental Constant, Elsevier, 
Amsterdam, 1977.  
(14) NF T 20-043 AFNOR, 1985. Chemical products for industrial 
use — Determination of partition coefficient — Flask shaking method.
 
(15) C. V. Eadsforth and P. Moser, Chemosphere, 1983, vol. 12, 1 
459. 
(16) A. Leo, C. Hansch and D. Elkins, Chem. Rev., 1971, vol. 71, 
525. 
(17) C. Hansch, A. Leo, S. H. Unger, K. H. Kim, D. Nikaitani and 
E. J. Lien, J. Med. Chem., 1973, vol. 16, 1 207.  
(18) W. B. Neely, D. R. Branson and G. E. Blau, Environ. Sci. 
Technol., 1974, vol. 8, 1 113.  
(19) D. S. Brown and E. W. Flagg, J. Environ. Qual., 1981, vol. 10, 
382. 
(20) J. K. Seydel and K. J. Schaper, Chemische Struktur und biolo ­
gische Activitaetvon Wirkstoffen, Verlag Chemie, Weinheim, 
New York, 1979.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 76
 
(21) R. Franke, Theoretical Drug Design Methods, Elsevier, 
Amsterdam, 1984.  
(22) Y. C. Martin, Quantitative Drug Design, Marcel Dekker, New 
York, Basel, 1978.  
(23) N. S. Nirrlees, S. J. Noulton, C. T. Murphy, P. J. Taylor, J. 
Мed. Chem., 1976, vol. 19, 615.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 77
 
Допълнение  1 
МЕТОДИ  ЗА ИЗЧИСЛЯВАНЕ /ПРИБЛИЗИТЕЛНА  ОЦЕНКА  
ВЪВЕДЕНИЕ  
Общо  въведение  към изчислителните  методи , както  и различни  данни  и 
примери , са дадени  в Ръководството  с методи  за определяне  на химични  
свойства  (а). 
Изчислените  стойности  на P ow могат  да се използват : 
— за да се определи  кой от експерименталните  методи  е по-подходящ  
(методът  на разклащането  в стъкленица  се прилага  в областта : l 
og P  ow = - 2 до 4, а методът  на HPLC — в областта : log P  ow = 0 до 6), 
— за да се изберат  подходящи  условия  на изпитването  (например  
сравнителни  вещества  за HPLC-процедурите , съотношение  n-октанол /­ 
вода  за метода  на разклащането  в стъкленица ), 
— като вътрешнолабораторна  проверка  за възможни  експериментални  
грешки , 
— за да се осигури  приблизителна  оценка  на P ow в случаите , когато  
експерименталните  методи  не могат  да се приложат  по технически  
причини . 
МЕТОДИ  ЗА ОЦЕНКА  
Предварителна  преценка  на коефициента  на разпределение  
Стойността  на коефициента  на разпределение  може  да се оцени  приблиз­  
ително , като се използват  разтворимостите  на изпитваното  вещество  в 
чистите  разтворители . За тази цел се пресмята : 
P прибл ¼ насимен  c nÄоктанол  
насимена  c вода 
ИЗЧИСЛИТЕЛНИ  МЕТОДИ  
Принцип  на изчислителните  методи  
Всички  изчислителни  методи  се основават  на формалното  фрагментиране  
на молекулата  на подходящи  подструктури , за които  са известни  надеждни  
стойности  на log P  ow . След  това log P  ow на цялата  молекула  се изчислява , 
като се сумират  стойностите  на съответните  фрагменти  и се прибавят  
корекционни  членове , отчитащи  вътрешномолекулните  взаимодействия . 
Списък  с константите  на фрагментите  и корекционните  членове  може  да се 
намери  в литературните  източници  (б) (в) (г) (д), някои  от които  редовно  се 
осъвременяват  (б). 
Критерии  за качество  
По принцип  надеждността  на изчислителния  метод  се намалява  с 
усложняването  на изпитваното  съединение . В случаите  на прости  
молекули  с ниски  молекулни  тегла  и една  или две функционални  групи  
могат  да се очакват  отклонения  от 0,1 до 0,3 логаритмични  единици  в 
стойностите  на log P  ow , получени  по различни  методи  на фрагментиране  
и измерената  стойност  на тази величина . Когато  молекулите  са по-сложни , 
грешката  става  по-голяма . Тя зависи  от надеждността  и достъпността  на 
фрагментационните  константи , както  и от възможността  да се разпознаят  
вътрешномолекулните  взаимодействия  (например  водородни  връзки ). Тя 
зависи  също  и от правилното  използване  на корекционните  членове  (този 
проблем  отпада , ако се използва  компютърният  софтуер  CLOGP-3) ( б). За 
съединения , които  могат  да преминават  в йонно  състояние , е важно  да 
бъдат  пресметнати  правилно  зарядът  и степента  на йонизацията . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 78
 
Изчислителни  процедури  
π-метод  на Ханш  
Първоначалната  константа  за хидрофобен  заместител  π, въведена  от 
Фуджира  и сътрудници  (е), е дефинирана  като: 
π x = log P  ow (PhX) - log P  ow (PhH)  
където  P ow (PhX) е коефициентът  на разпределение  на ароматното  произ­  
водно , а P ow (PhH) е този на основното  съединение . 
Например : 
π Cl = log P  ow (C 6 H 5 Cl) - log P  ow (C 6 H 6 ) = 2,84 - 2,13 = 0,71  
Съответно  на названието  си, π-методът  се прилага  предимно  за ароматни  
съединения . Стойностите  π на голям  брой  заместители  са дадени  в таблици  
в (б), (в) и (г). Te се използват  за изчисляване  на log P  ow зa ароматни  
молекули  или ароматни  субструктури . 
Метод  на Рекер  
Според  Рекер  (ж) стойността  на log P  ow ce изчислява  така: 
log P  ow ¼ X 
i a i f i þ X 
j ðкорекуцоннцме  щеновеÞ 
Където  f j представляват  константите  на различни  молекулни  фрагменти , а а i 
— честотата , с която  те се срещат  в изпитваната  молекула . Корекционните  
членове  могат  да се представят  като интегрален  множител  на една  обща  
константа  С m (така наречената  „магическа  константа “). Фрагментационните  
константи  f j и C m ce определят  от списък  от 1 054 експериментално  
получени  стойности  на P ow (825 съединения ), като се използва  мултиплик­  
ационен  регресионен  анализ  (в) (з). Определянето  на членовете , отчитащи  
вътрешномолекулните  взаимодействия , става  по редица  от правила , описани  
в препратки  (д) (з) (и). 
Метод  на Ханш  и Лео 
Според  Ханш  и Лео (в), стойността  на log P  ow ce изчислява  по уравнението : 
log P  ow ¼ X 
i a i f i þ X 
j b j F j 
където  f i представляват  константите  на различни  молекулни  фрагменти , F j – 
корекционните  членове , а „а“ и „b“ са съответните  честоти , с които  се 
срещат  тези фрагменти . Изведени  от експерименталните  стойности  на P ow 
по принципа  на пробата  и грешката , са получени  списъци  от стойностите  на 
атомни  и групови  фрагменти , както  и списъци  с корекционните  членове  F j 
(така наречените  „фактори “). В (а) и (в) са предложени  корекционните  
членове  за няколко  различни  класа . Доста  трудоемко  и бавно  е да се 
вземат  под внимание  всички  правила  и корекционни  параметри . Затова  са 
разработени  софтуерни  продукти  (б). 
Комбиниран  метод  
Изчисляването  на log P  ow за сложни  молекули  може  значително  да се 
подобри , ако молекулата  се раздели  на по-големи  структури , за които  
могат  да се намерят  точни  log P  ow стойности  или от таблици  (б) (в), или 
от собствени  измервания . Такива  фрагменти  (например  хетероцикли , 
антрахинон , азобензен ) могат  да се комбинират  с π-стойностите  на Ханш  
или с фрагментационните  константи  на Рекер  и Лео. 
Забележки : 
i) Изчислителните  методи  могат  да се прилагат  само  за съединения , които  
преминават  частично  или напълно  в йонно  състояние , където  е 
възможно  да се предвидят  необходимите  корекционни  фактори . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 79
 
ii) Ако може  да се предположи  наличието  на вътрешномолекулни  
водородни  връзки , трябва  да се прибавят  съответните  корекционни  
членове  (прибл . от + 0,6 до + 1,0 log P  ow единици ) (а). Данни  за присъ­  
ствието  на такива  връзки  могат  да се получат  от пространствени  модели  
или от спектроскопски  данни  за молекулата . 
iii) Ако са възможни  няколко  тавтомерни  форми , за основа  на изчисленията  
се взема  най-вероятната  форма . 
iv) Внимателно  трябва  да се следят  промените , които  се правят  в списъците  
от константи  на фрагментите . 
Отчитане  на резултатите  
Когато  се използват  методи  за изчисляване  или приблизителна  оценка , в 
протокола  трябва  по възможност  да се включи  следната  информация : 
— описание  на веществото  (смес , примеси  и т.н.), 
— признаци  за възможни  вътрешномолекулни  водородни  връзки , за 
дисоциация , поява  на заряд  или някакви  други  необичайни  ефекти  
(напр . тавтомерия ), 
— описание  на изчислителния  метод , 
— указание  какви  бази  данни  са използвани  или предоставяне  на такива , 
— особености  при подбора  на фрагментите , 
— разбираема  документация  от изчисленията . 
ПРЕПРАТКИ  
(а) W. J. Lyman, W. F. Rehl and D. H. Rosenblatt (ed.), Handbook of Chemical 
Property Estimation Methods, McGraw-Hill, New York, 1983.  
(б) Pomona College, Medicinal Chemistry Project, Claremon, California 91711, 
USA, Log P Database and Med. Chem. Software (Program CLOGP - 3).  
(в) C. Hansch, A. J. Leo, Substituent Constants for Correlation Analysis in 
Chemistry and Biology, John Wiley, New York, 1979.  
(г) A. Leo, C. Hansch, D. Elkins, Chem. Rev., 1971, vol. 71, 525.  
(д) F. Rekker, H. M., de Kort, E. J. Med. Chem. - Chill. Ther., 1979, vol. 14, 
479. 
(е) T. Fujita, J. Iwasa and C. Hansch, J. Am. Chem. Soc., 1964, vol. 86, 5175.  
(ж) R. F. Rekker, The hydrophobic Fragmental Constant, Pharmacochemistry 
Library, Elsevier, New York, 1977, vol. 1.  
(з) C. V. Eadsforth, P. Moser, Chemosphere, 1983, vol. 12, 1459.  
(и) R. A. Scherrer, ACS, American Chemical Society, Washington DC, 1984, 
Symposium Series 255, p. 225.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 80
 
Допълнение  2 
Препоръчвани  сравнителни  вещества  за метода  на HPLC  
№ Сравнително  вещество  log P  ow рК а 
1 2- бутанон  0,3 
2 4- ацетилпиридин  0,5 
3 Анилин  0,9 
4 Ацетанилид  1,0 
5 Бензилов  алкохол  1,1 
6 р-метоксифенол  1,3 pK  a = 10,26 
7 Феноксиоцетна  киселина  1,4 рК а = 3,12 
8 Фенол  1,5 pK  a = 9,92 
9 2,4- динитрофенол  1,5 pK  a = 3,96 
10 Бензонитрил  1,6 
11 Фенилацетонитрил  1,6 
12 4- метилбензилов  алкохол  1,6 
13 Ацетофенон  1,7 
14 2- нитрофенол  1,8 рК а = 7,17 
15 3- нитробензоена  киселина  1,8 pK  a = 3,47 
16 4- хлороанилин  1,8 рК а = 4,15 
17 Нитробензен  1,9 
18 Канелен  алкохол  1,9 
19 Бензоена  киселина  1,9 рК а = 4,19 
20 р-крезол  1,9 pK  a = 10,17 
21 Канелена  киселина  2,1 pK  a = 3,89 цис 4,44 транс  
22 Анизол  2,1 
23 Метилбензоат  2,1 
24 Бензен  2,1 
25 3- метилбензоена  киселина  2,4 pK  a = 4,27 
26 4- хлорфенол  2,4 рК а = 9,1 
27 Трихлороетилен  2,4 
28 Атрацин  2,6 
29 Етилбензоат  2,6 
30 2,6- дихлоробензонитрил  2,6 
31 3- хлорбензоена  киселина  2,7 pK  a = 3,82 
32 Толуен  2,7 
33 1- нафтол  2,7 pK  a = 9,34 
34 2,3- дихлоранилин  2,8 
35 Хлорбензен  2,8 
36 Алил -фенил  етер 2,9 
37 Бромбензен  3,0  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 81
 
№ Сравнително  вещество  log P  ow рК а 
38 Етилбензен  3,2 
39 Бензофенон  3,2 
40 4- фенилфенол  3,2 pK  a = 9,54 
41 Тимол  3,3 
42 1,4- дихлорбензен  3,4 
43 Дифениламин  3,4 pK  a = 0,79 
44 Нафтален  3,6 
45 Фенилбензоат  3,6 
46 Изопропилбензен  3,7 
47 2,4,6- трихлорфенол  3,7 рК а = 6 
48 Бифенил  4,0 
49 Бензилбензоат  4,0 
50 2,4- динитро -6-ѕес.-бутилфенол  4,1 
51 1,2,4- трихлрбензен  4,2 
52 Додеканова  киселина  4,2 
53 Дифенилов  етер 4,2 
54 n- бутилбензен  4,5 
55 Фенантрен  4,5 
56 Флуорантен  4,7 
57 Дибензил  4,8 
58 2,6- дифенилпиридин  4,9 
59 Трифениламин  5,7 
60 ДДТ  6,2 
Други  сравнителни  вещества  с нисък  log P  ow 
1 Никотинова  киселина  - 0,07  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 82
 
А.9. ТОЧКА  НА ВЪЗПЛАМЕНЯВАНЕ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Преди  да се проведе  това изпитване , е полезно  да има 
предварителна  информация  за запалимостта  на веществото . 
Изпитвателната  процедура  се прилага  за течни  вещества , чиито  
пари  могат  да се възпламенят  от източници  на възпламеняване . 
Методите  за изпитване , изброени  в този текст , дават  достоверни  
резултати  само  за онези  обхвати  от точки  на възпламеняване , 
които  са посочени  в отделните  методи . 
При подбора  на метода  трябва  да се предвиди  възможността  за 
химична  реакция  между  веществото  и държателя  на пробата . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Точката  на възпламеняване  е най-ниската  температура , 
коригирана  към налягане  101,325 кРа, при която  една  течност , 
в условията  на метода , отделя  пари  в такова  количество , че в 
измервателния  съд се получават  запалими  пари  или смес , 
запалима  на въздух . 
Единици : o С 
t = T – 273,15  
(t в o C и T в K) 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не във всички  случаи , когато  се изпитва  ново  вещество , е необ­  
ходимо  да се използват  вещества  за сравнение . Преди  всичко  те 
трябва  да служат  за периодична  проверка  на действието  на 
метода  и да позволяват  сравняване  с резултатите , получени  по 
други  методи . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Веществото  се поставя  в изпитвателен  съд и се нагрява  или 
охлажда  до температурата  на изпитване  по начина , който  е 
описан  при отделните  методи  за изпитване . Правят  се опити  за 
запалване  на веществото , за да се разбере  дали  пробата  може  да 
се възпламени  при дадената  температура . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
1.5.1.  Повторяемост  
Повторяемостта  е различна  в зависимост  от областта , в която  се 
намира  точката  на възпламеняване  и от използвания  метод  за 
измерването  ѝ; максимум  2 o С. 
1.5.2.  Чувствителност  
Чувствителността  зависи  от използвания  метод  на изпитване . 
1.5.3.  Специфичност  
Специфичността  на някои  от методите  е ограничена  до няколко  
обхвата  от точки  на възпламеняване  и е свързана  с данните  за 
самото  вещество  (например  висок  вискозитет ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 83
 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Подготовка  
Проба  от изпитваното  вещество  се поставя  в изпитвателния  
апарат  съгласно  1.6.3.1 и/или 1.6.3.2.  
С оглед  на безопасността  се препоръчва  при този метод  да се 
употребяват  само  проби  с малък  размер  — до 2 cm  3 , от горива  
или токсични  вещества . 
1.6.2.  Условия  на изпитването  
Доколкото  е съобразно  с оглед  на безопасността , апаратът  
трябва  да се постави  на място , където  не става  течение . 
1.6.3.  Извършване  на изпитването  
1.6.3.1.  Равновесен  метод  
Вж. ISO 1516, ISO 3680, ISO 1523, ISO 3679.  
1.6.3.2.  Неравновесен  метод  
Апарат  на Абел : 
Вж. BS 2000 част 170, NF M 07-011, NF T 66-009.  
Апарат  на Абел -Пенски : 
Вж. EN 57, DIN 51755 част 1 (за температури  от 5 до 65  o С), 
DIN 51755 част 2 (за температури  под 5 o С), NF M 07-036.  
Апарат  на Таг: 
Вж. ASTM D 56.  
Апарат  на Пенски -Мартенс : 
Вж. ISO 2719, EN 11, DIN 51758, ASTM D 93, BS 2000-34, 
NF M 07-019.  
Забележки : 
Когато  точката  на възпламеняване , определена  по неравновесния  
метод  от 1.6.3.2, се окаже  0 ± 2  o С, 21 ± 2  o С или 55 ± 2  o С, тя 
трябва  да се потвърди  със същия  апарат  по равновесния  метод . 
В протокола  се посочват  само  методите , чрез които  се определя  
температурата , при която  е измерена  точката  на възпламеняване . 
За да се определи  точката  на възпламеняване  на вискозни  
течности  (бои, лепила  и други  подобни ), съдържащи  разт­  
ворители , се използват  само  апарати  и методи  за изпитване , 
подходящи  за определяне  на точката  на възпламеняване  на 
вискозни  течности . 
Вж. ISO 3679, ISO 3680, ISO 1523, DIN 53213 част 1. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 84
 
2. ДАННИ  
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  с резултатите  от изпитването  трябва  по възможност  
да включва  следната  информация : 
— точно  определение  на веществата  (вид и примеси ), 
— съобщава  се използваният  метод , както  и всички  възможни  
отклонения  от него , 
— резултатите  и всички  допълнителни  бележки  относно  
тяхното  интерпретиране . 
4. ПОЗОВАВАНИЯ  
Няма . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 85
 
А.10. ЗАПАЛИМОСТ  (ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Преди  да се проведе  това измерване , е полезно  да има 
предварителна  информация  за потенциалните  експлозивни  
свойства  на веществото . 
Методът  трябва  да се прилага  само  върху  прахообразни , 
зърнести  или пастообразни  вещества . 
За да не бъдат  включвани  всички  вещества , които  могат  да се 
запалват , а само  онези , които  горят  бързо  или чието  поведение  
при горене  по някакъв  начин  е особено  опасно , за лесноз­  
апалими  се считат  само  веществата  със скорост  на изгаряне , 
по-висока  от някаква  гранична  стойност . 
Особено  опасно  е, ако накаляването  до бяло  се разпространи  
през разпрашен  метал , защото  гасенето  на пожара  е свързано  с 
много  трудности . Разпрашените  метали  се считат  за леснозап­  
алими , ако поддържат  разпространението  на накаляването  през 
масата  си в рамките  на определено  време . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Време  на изгаряне , изразено  в секунди . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма  определени . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Веществото  се формова  в непрекъсната  лента  или ако е прахо­  
образно , се насипва  под формата  на лента , дълга  около  250 mm. 
Провежда  се предварителен  скрийнинг , за да се определи  дали  
при запалване  с газова  горелка  горенето  се разпространява  с 
пламък , или започва  тлеене . Ако в рамките  на определено  
време  горенето  се разпространи  до над 200 mm от дължината  
на лентата , се провежда  пълната  програма  за измерване  на 
скоростта  на изгаряне . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Не са определени . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 86
 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Предварителен  скрийнинг -метод  
Веществото  се формова  в непрекъсната  лента  или се насипва  
под формата  на купчинка  с дължина  250 mm, ширина  20 mm 
и височина  10 mm върху  плоча  от негорящ  непорьозен  материал  
с ниска  топлопроводимост . Горещият  пламък  на газовата  
горелка  (с минимален  диаметър  5 mm) ce допира  до единия  
край  на лентата , докато  пудрата  се запали  или най-много  за 2 
минути  (5 минути  за разпрашени  метали  или метални  сплави ). 
Трябва  да се проследи  дали  горенето  се разпространява  до 
200 mm от дължината  на лентата  в рамките  на 4 минути  (или 
40 минути  за разпрашени  метали ). Ако веществото  не се запали  
или не разпространява  горенето  (чрез изгаряне  с пламък  или 
чрез тлеене ) до 200 mm от лентата  за по-малко  от 4 минути  
(или 40 минути ), веществото  не се счита  за високозапалимо  и 
не е необходимо  да се провеждат  повече  измервания . Ако 
веществото  разпространява  горенето  на 200 mm дължина  за 
по-малко  от 4 минути  (или 40 минути  за разпрашени  метали ), 
трябва  да се приложи  описаната  по-долу  процедура  (точка  1.6.2 
и следващите ). 
1.6.2.  Измерване  на скоростта  на горене  
1.6.2.1.  Подготовка  
Прахообразните  или зърнести  вещества  се насипват  свободно  в 
матрица  с дължина  250 mm и триъгълно  напречно  сечение  с 
височина  на вътрешната  част 10 mm и ширина  20 mm. От 
двете  страни  на матрицата  надлъжно  се монтират  две метални  
пластини  като латерални  ограничители . Те изпъкват  с 2 mm над 
горния  край  на триъгълното  сечение  (фигура ). След  това 
матрицата  се пуска  три пъти  от височина  2 cm върху  твърда  
повърхност  и при необходимост  се допълва  догоре . После  
латералните  ограничители  се махат  и излишното  вещество  се 
изважда . Върху  матрицата  се поставя  плоча  от негорящ  
непорьозен  материал  с ниска  топлопроводимост , приспосо­  
блението  се обръща  и матрицата  се отстранява . 
Пастообразните  вещества  се разстилат  върху  плочата  от негорящ  
гладък  материал  с ниска  топлопроводимост  под формата  на 
въже  с дължина  250 mm и напречно  сечение  около  1 cm  2 . 
1.6.2.2.  Условия  на изпитването  
Ако изпитваното  вещество  е чувствително  към влага , 
изпитването  трябва  да се извърши  колкото  е възможно  по- 
бързо  след  неговото  изваждане  от контейнера . 
1.6.2.3.  Провеждане  на изпитването  
Купчинка  от веществото  се поставя  напречно  на въздушния  
поток  във вентилационен  шкаф . 
Скоростта  на въздуха  трябва  да е достатъчно  висока , за да се 
избегне  излитането  на парите  в лабораторията , и не бива  да се 
променя  по време  на изпитването . Около  апарата  се издига  
защитен  екран . 
Горещият  пламък  от газова  горелка  (с минимален  диаметър  
5 mm) ce използва  за запалването  на купчината  от единия  
край . Когато  купчината  изгори  до дължина  80 mm, ce измерва  
скоростта  на изгаряне  на следващите  100 mm.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 87
 
Изпитването  се провежда  шест  пъти  (освен  ако по-рано  не се 
наблюдава  положителен  резултат ), като всеки  път се използва  
чиста  студена  плоча . 
2. ДАННИ  
За изчисленията  се използват  времето  на изгаряне , получено  от 
предварителния  скрийнинг  (1.6.1) и най-краткото  време  на 
изгаряне  от най-много  шест  изпитвания  (1.6.2.3).  
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗМЕРВАНЕТО  
Протоколът  с резултатите  от изпитването  трябва  по възможност  
да съдържа  следната  информация : 
— точно  определение  на веществото  (вид и примеси ), 
— описание  на изпитваното  вещество , неговото  физично  
състояние , включително  съдържанието  на влага , 
— резултати  от предварителния  скрийнинг  и от измерването  на 
скоростта  на изгаряне , ако е правено  такова , 
— всички  допълнителни  бележки  относно  интерпретирането  на 
резултатите . 
3.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Прахообразните , зърнестите  или пастообразните  вещества  
трябва  да се считат  за леснозапалими , ако времето  на 
изгаряне , получено  при някое  от изпитванията  съгласно  изпитв­  
ателната  процедура , описана  в 1.6.2, е по-малко  от 45 секунди . 
Разпрашените  метали  или метални  сплави  се считат  за лесноз­  
апалими , ако могат  да се възпламенят  и пламъкът  или зоната  на 
реакцията  се разпространяват  по цялата  дължина  на образеца  
за 10 минути  или по-малко . 
4. ПРЕПРАТКИ  
NF T 20-042 (SEPT 85), Chemical products for industrial use. 
Determination of the flammability of solids.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 88
 
Допълнение  
Фигура  
Матрица  и спомагателни  приспособления  за приготвяне  на купчинката  от веществото  
(всички  размери  са в милиметри )
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 89
 
А.11. ЗАПАЛИМОСТ  (ГАЗОВЕ ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  позволява  да се определи  дали  газовете , смесени  с 
въздух  при стайна  температура  (до 20  o С) и атмосферно  
налягане , са запалими  и ако е така, в каква  област  от конце­  
нтрации  става  запалването . Смесите  с нарастващи  концентрации  
на изпитвания  газ във въздух  се подлагат  на действието  на 
електрическа  искра  и се наблюдава  дали  следва  запалване . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Областта  на запалимост  представлява  областта  от концентрации  
между  горната  и долната  граница  на експлозивност . Горната  и 
долната  граница  на експлозивност  са онези  граници  на конце­  
нтрацията  на запалимия  газ при смесването  му с въздуха , при 
които  не се наблюдава  разпространяване  на пламък . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не са определени . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Концентрацията  на газа във въздух  се увеличава  постепенно , 
като на всяка  стъпка  сместа  се подлага  на действието  на 
електрическа  искра . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Не са дадени . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Апаратура  
Измервателният  съд представлява  изправен  стъклен  цилиндър  с 
минимален  вътрешен  диаметър  50 mm и минимална  височина  
300 mm. Запалителните  електроди  са разделени  на разстояние  от 
3 до 5 mm и са разположени  на височина  60 mm от дъното  на 
цилиндъра . Цилиндърът  е снабден  с отвор  за намаляване  на 
налягането . Апаратът  трябва  да бъде  защитен  с екран , за да се 
ограничат  щетите  при експлозия . 
Като  средство  за запалване  се използва  стояща  индукционна  
искра  с продължителност  0,5 sec, която  се генерира  от транс­  
форматор  за високо  напрежение  с изходно  напрежение  от 10 до 
15 kV ( максимална  входна  мощност  300 W). Пример  за 
подходящ  апарат  е описан  в препратка  (2). 
1.6.2.  Условия  на изпитването  
Изпитването  трябва  да се провежда  при стайна  температура  
(около  20  o С). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 90
 
1.6.3.  Провеждане  на изпитването  
Смес  от газ и въздух  с известна  концентрация  на газа се 
въвежда  в стъкления  цилиндър  с помощта  на пропорционираща  
помпа . През  сместа  се прекарва  искра  и се наблюдава  дали  
пламъкът  се отделя  самостоятелно  от източника  на възпл­  
аменяване  и дали  се разпространява  независимо . Конце­  
нтрацията  на газа се променя  на стъпки  от 1 об. %, докато  
протече  запалването  по описания  по-горе начин . 
Ако химичната  структура  на газа показва , че той може  да не е 
запалим  и ако стехиометричната  му смес  с въздуха  може  да се 
пресметне , е необходимо  да се изпитват  на стъпки  от 1 % само  
смеси  с концентрации  на газа до 10 %, следователно  стехиом­  
етричният  състав  е над 10 %.  
2. ДАННИ  
За определянето  на това свойство  единствената  полезна  
информация  е наличието  на разпространение  на пламъка . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  с резултатите  от изпитването  трябва  по възможност  
да съдържа  следната  информация : 
— точно  определение  на веществото  (вид и примеси ), 
— описание  и размери  на използвания  апарат , 
— температурата , при която  е проведено  изпитването , 
— измерени  концентрации  и получени  резултати , 
— резултат  от изпитването : незапалим  газ или леснозапалим  
газ, 
— ако е направено  заключението , че газът  не е запалим , трябва  
да се съобщи  обхватът  от концентрации , в който  е проведено  
изпитването  на стъпки  от 1 %,  
— да се отчете  цялата  информация  и всички  бележки , свързани  
с интерпретирането  на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) NF T 20-041 (Sept. 85). Chemical products for industrial use. 
Determination of the flammability of gases.  
(2) W. Berthold, B. Conrad, T. Grewer, H. Grosse. Einer Standart- 
Apparatur zur Messung von Explosionsgrenzen. Chem.-Ing.- Tech., 1984, vol. 56, 2, 126-127. Wortmann, T. Rekker und 
H. Schacke. 'Entwicklung.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 91
 
A.12.  ЗАПАЛИМОСТ  (ПРИ  КОНТАКТ  С ВОДА ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  за изпитване  може  да се използва , за да се определи  
дали  реакцията  на дадено  вещество  с вода  или влажен  въздух  
води  до появата  на опасно  количество  от един  или няколко  газа, 
които  може  да се окажат  леснозапалими . 
Методът  може  да се прилага  както  за твърди , така и за течни  
вещества . Той не се прилага  за вещества , които  се запалват  
спонтанно  при контакт  с въздуха . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Леснозапалими : веществата , които  при контакт  с вода  или 
влажен  въздух  отделят  леснозапалими  газове  в опасни  
количества  с минимална  скорост  1 литър /kg за един  час. 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Веществото  се изпитва  съгласно  описаната  по-долу  последоват­  
елност  от стъпки ; ако при някоя  стъпка  протече  запалване , не са 
необходими  повече  изпитвания . Ако е известно , че веществото  
не реагира  бурно  с вода , се продължава  до стъпка  4 (1.3.4).  
1.3.1.  Стъпка  1 
Изпитваното  вещество  се поставя  в плитък  съд, съдържащ  дест­  
илирана  вода , при 20 o С и се наблюдава  дали  отделеният  газ се 
запалва  или не. 
1.3.2.  Стъпка  2 
Изпитваното  вещество  се поставя  на филтърна  хартия , която  
плува  на повърхността  на съд, напълнен  с дестилирана  вода , 
при 20  o С и се наблюдава  дали  отделеният  газ се запалва . 
Филтърната  хартия  е необходима  само  да задържа  веществото  
на едно  място , така че да се увеличи  вероятността  от запалване . 
1.3.3.  Стъпка  3 
Прави  се купчинка  от изпитваното  вещество  с височина  
приблизително  2 cm и диаметър  3 cm. В купчинката  се капват  
няколко  капки  вода  и се наблюдава  дали  отделеният  газ се 
запалва . 
1.3.4.  Стъпка  4 
Изпитваното  вещество  се смесва  с дестилирана  вода  при 20 o С и 
скоростта  на отделяне  на газ се измерва  в продължение  на седем  
часа на едночасови  интервали . Ако скоростта  на отделяне  на 
газа е променлива  или нараства  в края  на седемчасовия  
период , времето  на изпитване  трябва  да се удължи  до 
максимум  пет дена . Изпитването  се прекратява  в момента , в 
който  скоростта  на отделяне  надвиши  1 литър /kg за час. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 92
 
1.4. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не са определени . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Не са дадени . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Стъпка  1 
1.6.1.1.  Условия  на изпитването  
Изпитването  се провежда  при стайна  температура  (около  20 o С). 
1.6.1.2.  Провеждане  на изпитването  
Малко  количество  (приблизително  2 mm в диаметър ) от 
изпитваното  вещество  се поставя  в плитък  съд с дестилирана  
вода . Следи  се: i) дали  се отделя  газ, и ii) дали  газът  се 
запалва . Ако се наблюдава  запалване  на газа, не са необходими  
повече  изпитвания  на веществото , защото  то се определя  като 
опасно . 
1.6.2.  Стъпка  2 
1.6.2.1.  Приспособление  за изпитване  
Филтърна  хартия  се поставя  да легне  на повърхността  на дест­  
илирана  вода  в подходящ  съд, например  изпарителен  съд с 
диаметър  100 mm.  
1.6.2.2.  Условия  на изпитването  
Изпитването  се провежда  при стайна  температура  (около  20 o С). 
1.6.2.3.  Провеждане  на изпитването  
Малко  количество  от изпитваното  вещество  (приблизително  
2 mm в диаметър ) се поставя  в центъра  на филтърната  хартия . 
Следи  се: i) дали  се отделя  газ, и ii) дали  газът  се запалва . Ако 
се наблюдава  запалване  на газа, не са необходими  повече  
изпитвания  на веществото , защото  то се определя  като опасно . 
1.6.3.  Стъпка  3 
1.6.3.1.  Условия  на изпитването  
Изпитването  се провежда  при стайна  температура  (около  20 o С). 
1.6.3.2.  Провеждане  на изпитването  
Оформя  се купчинка  от изпитваното  вещество  с височина  
приблизително  2 cm и диаметър  3 cm, на върха  на която  се 
прави  вдлъбнатина . Във вдлъбнатината  се прибавят  няколко  
капки  вода  и се следи : i) дали  се отделя  газ, и ii) дали  газът  
се запалва . Ако се наблюдава  запалване  на газа, не са необ­  
ходими  повече  изпитвания  на веществото , защото  то се 
определя  като опасно . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 93
 
1.6.4.  Стъпка  4 
1.6.4.1.  Апаратура  
Апаратурата  се приготвя , както  е показано  на фигурата . 
1.6.4.2.  Условия  на изпитването  
Проверява  се дали  контейнерът  с веществото  съдържа  прахо­  
образни  частици  с размери  < 500 μm. Ако прахът  е повече  от 
1 тегл. % от общото  количество  или веществото  е ронливо , 
цялото  вещество  трябва  да се стрие  на прах  преди  изпитването , 
така че при съхранение  или работа  с него  да няма  възможност  за 
намаляване  на размера  на частиците . В противен  случай  
веществото  се изпитва  така, както  е получено . Изпитването  се 
провежда  при стайна  температура  (около  20  o С) и атмосферно  
налягане . 
1.6.4.3.  Провеждане  на изпитването  
От 10 до 20 ml вода  се поставят  в делителната  фуния  на апарата . 
Десет  грама  от веществото  се слагат  в коничната  колба . Обемът  
на отделения  газ може  да се измерва  с някое  подходящо  прис­  
пособление . Запушалката  на делителната  фуния  се маха , за да 
може  водата  да влиза  в коничната  колба , и часовникът  се пуска . 
Отделеният  газ се измерва  на всеки  час в продължение  на седем  
часа. Ако по време  на този период  отделянето  на газ е 
неравномерно  или ако в края  на периода  скоростта  на 
отделяне  нараства , изпитването  трябва  да продължи  до 
максимум  пет дена . Ако в даден  момент  от изпитването  
скоростта  на отделяне  на газа надвиши  1 литър /kg за час, 
изпитването  се прекратява . Изпитването  се провежда  три пъти . 
Ако химичната  природа  на газа не е известна , той трябва  да се 
анализира . Когато  газът  съдържа  леснозапалими  компоненти  и 
не е известно  дали  цялата  смес  не е леснозапалима , трябва  да се 
приготви  смес  със същия  състав  и да се изпита  по метод  А.11. 
2. ДАННИ  
Веществото  се счита  за опасно , ако: 
— при някоя  от стъпките  на изпитвателната  процедура  настъпи  
спонтанно  запалване , 
или 
— има отделяне  на запалим  газ със скорост , по-голяма  от 1 
литър /kg вещество  за един  час. 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  с резултатите  от изпитването  трябва  по възможност  
да съдържа  следната  информация : 
— точно  определение  на веществото  (вид и примеси ), 
— детайлно  описание  на първоначалното  приготвяне  на 
изпитваното  вещество , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 94
 
— резултати  от изпитванията  (стъпки  1, 2, 3 и 4), 
— химична  природа  на отделения  газ, 
— скорост  на отделяне  на газа, ако е била  изпълнена  стъпка  4 
(1.6.4),  
— всички  допълнителни  бележки , свързани  с интерпретирането  
на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Recommendations on the transport of dangerous goods, test and 
criteria, 1990, United Nations, New York.  
(2) NF T 20-040 (Sept. 85). Chemical products for industrial use. 
Determination of the flammability of gases formed by the 
hydrolysis of solid and liquid products.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 95
 
Допълнение  
Фигура  
Апаратура
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 96
 
А.13. ПИРОФОРНИ  СВОЙСТВА  НА ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА  И 
ТЕЧНОСТИ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Процедурата  за изпитване  се прилага  за твърди  и течни  
вещества , които  се запалват  спонтанно  на стайна  температура  
(около  20  o С), малко  след  като са влезли  в контакт  с въздуха . 
Веществата , които  трябва  да бъдат  изложени  на въздух  за часове  
или дни при стайна  температура  или при нарастващи  
температури  преди  да се запалят , не са обект  на изпитване  по 
този метод . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Счита  се, че пирофорни  свойства  притежават  вещества , които  се 
запалват  или овъгляват  при условията , описани  в 1.6.  
Самозапалването  на течности  може  да се изпитва  също  и по 
метод  А.15 Температура  на самозапалване  (течности  и газове ). 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не са определени . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Веществото , твърдо  или течно , се смесва  с инертен  носител  и се 
привежда  в контакт  с въздуха  при температурата  на околната  
среда  за период  от пет минути . Ако течните  вещества  не се 
запалят , те се абсорбират  върху  филтърна  хартия  и се излагат  
на въздух  при температурата  на средата  (около  20  o С) за пет 
минути . Ако твърдото  вещество  или течността  се запалят  или 
ако течността  се запали  или овъгли  филтърната  хартия , 
веществото  се счита  за пирофорно . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Повторяемост : с оглед  на безопасността  един  положителен  
резултат  се счита  за достатъчен  за причисляване  на веществото  
към пирофорните  вещества . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Апаратура  
Порцеланова  чашка  с диаметър  към 10 cm се запълва  с диатомит  
до височина  приблизително  5 mm при стайна  температура  
(около  20  o С). 
Забележка : 
Диатомитът  или друго  подобно  леснодостъпно  инертно  
вещество  се приема  за представител  на почвата , върху  която  
изпитваното  вещество  може  да се разлее  в случай  на злополука . 
За изпитването  на течности , които  не се запалват  на въздуха , ако 
са в контакт  с инертен  носител , е необходимо  да се използва  
суха  филтърна  хартия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 97
 
1.6.2.  Провеждане  на изпитването  
а) Прахообразни  твърди  вещества  
От 1 до 2 cm  3 от изпитваното  вещество  се изсипват  от височина  
около  1 m върху  негоряща  повърхност  и се наблюдава  дали  
веществото  се запалва  по време  на падането  или в рамките  на 
пет минути  след  това. 
Процедурата  се повтаря  шест  пъти , освен  ако преди  това не 
настъпи  запалване . 
б) Течности  
Около  5 cm  3 от изпитваната  течност  се изливат  в предварително  
приготвена  порцеланова  чашка  и се наблюдава  дали  веществото  
ще се запали  в рамките  на пет минути . 
Ако след  шесткратно  повторение  на тази процедура  не настъпи  
запалване , се провежда  следното  изпитване : 
0,5 ml от изпитваната  проба  се изпръскват  от спринцовка  върху  
нагъната  филтърна  хартия  и се следи  дали  филтърната  хартия  
ще се запали  или ще се овъгли  в рамките  на пет минути  след  
прибавянето  на течността . Опитът  се повтаря  три пъти , освен  
ако запалването  или овъгляването  на хартията  не настъпи  по- 
рано . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Изпитването  се прекратява  веднага  след  получаване  на полож­  
ителен  резултат  при някой  от опитите . 
2.2. ОЦЕНКА  НА ДАННИТЕ  
Ако веществото , смесено  с инертен  носител , се запали  до пет 
минути  след  като е изложено  на въздуха  или ако течността  
овъгли  или изгори  филтърната  хартия  до пет минути  след  като 
е накапана  върху  нея и изложена  на въздуха , съответното  
вещество  се счита  за пирофорно . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  с резултатите  трябва  по възможност  да съдържа  
следната  информация : 
— точно  определение  на веществото  (вид и примеси ), 
— резултати  от изпитванията , 
— всички  допълнителни  бележки , свързани  с интерпретирането  
на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) NF T 20-039 (Sept. 85). Chemical products for industrial use. 
Determination of the spontaneous flammability of solids and liquids.
 
(2) Recommendations on the Transport of Dangerous Goods, Test 
and criteria, 1990, United Nations, New York.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 98
 
A.14.  ЕКСПЛОЗИВНИ  СВОЙСТВА  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Методът  предоставя  експериментална  схема , предназначена  да 
определи  дали  дадено  твърдо  или пастообразно  вещество  е 
експлозивно , когато  е подложено  на действието  на пламък  
(термична  чувствителност ) или на удар , или триене  (чувствит­  
елност  към механични  въздействия ) и дали  дадена  течност  може  
да експлодира  под действието  на пламък  или при удар . 
Методът  се състои  от три части : 
а) изпитване  на термичната  чувствителност  (1); 
б) изпитване  на механичната  чувствителност  при удар  (1); 
в) изпитване  на механичната  чувствителност  при триене  (1). 
Методът  осигурява  данни  за оценка  на вероятността  да се 
причини  експлозия  чрез някое  обичайно  въздействие . Той не е 
предназначен  да установява  дали  веществото  може  да 
експлодира  при всякакви  условия . 
Методът  е подходящ  за определяне  дали  едно  вещество  е 
експлозивно  (термична  и механична  чувствителност ) при точно  
определените  условия , посочени  в директивата . Той се базира  на 
различни  типове  апарати , широко  използвани  в много  страни  
(1), които  обикновено  дават  значими  резултати . Трябва  да се 
признае , че методът  не е окончателен . При него  може  да се 
използва  и алтернативна  апаратура , освен  описаната , в случай  
че тя е международно  утвърдена  и може  да се направи  адекватна  
връзка  между  получените  резултати  и тези, получени  с уста­  
новената  апаратура . 
Когато  достъпните  термодинамични  данни  (например  топлина  
на образуване , топлина  на разлагане ) и/или отсъствието  на 
някои  функционални  групи  (2) в структурната  формула  
показват  извън  всякакво  съмнение , че веществото  не може  да 
се разлага  бързо  с отделяне  на газове  или освобождаване  на 
топлина  (т.е. материалът  не е експлозивен ), не е необходимо  
да се провеждат  изпитвания . За течностите  не се изисква  
изпитване  на механична  чувствителност  при триене . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Експлозивни : 
за експлозивни  се считат  вещества , които  могат  да експлодират  
при действието  на пламък  или които  са чувствителни  към удар  
или триене  в определената  апаратура  (или проявяват  по-голяма  
механична  чувствителност  от 1,3-динитробензена  в алтернативна  
апаратура ). 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
За методите  с триене  и удар  като сравнително  вещество  се 
използва  кристален  1,3-динитробензен  с техническа  чистота , 
пресят  до размер  на частиците  0,5 mm.  
За втората  серия  от изпитвания  с триене  и удар  се използва  
перхидро -1,3,5-тринитро -1,3,5-триазин  (RDX, хексоген , 
циклонит  — CAS 121-82-4), прекристализиран  от воден  цеклох­  
ексанон , пресят  във влажно  състояние  през 250 μm, съхраняван  
над сито  от 150 μm и изсушен  при 103 ± 2  o С (за 4 часа). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 99
 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
За да се определят  условията  за безопасното  провеждане  на 
трите  изпитвания  на чувствителността , е необходимо  да се 
проведат  предварителни  изпитвания . 
1.4.1.  Определяне  на условията  за безопасна  работа  (3) 
С оглед  на безопасността  преди  провеждането  на основните  
изпитвания  много  малки  проби  (около  10 mg) от веществото  
се подлагат  на нагряване  на открито  с газова  горелка , на удар  
в някакъв  подходящ  по форма  апарат  и на триене  с дървен  чук 
върху  наковалня  или в каква  да е по форма  фрикционна  
машина . Целта  е да се установи  дали  веществото  е толкова  
чувствително  и експлозивно , че предписаните  изпитвания , по- 
специално  тези за термичната  чувствителност , трябва  да се 
провеждат  със специални  предпазни  мерки , така че да се 
избегне  нараняването  на оператора . 
1.4.2.  Термична  чувствителност  
Методът  включва  нагряване  на веществото  в стоманена  тръба , 
закрита  с пластинки  с отвори  с различен  диаметър  на дупките , 
при което  се определя  дали  веществото  може  да експлодира  в 
условията  на интензивно  нагряване  в затворено  пространство . 
1.4.3.  Механична  чувствителност  (удар ) 
Методът  включва  подлагане  на веществото  на удар  с точно  
определена  маса , която  се пуска  върху  него  от определена  
височина . 
1.4.4.  Механична  чувствителност  (триене ) 
Методът  включва  подлагане  на твърдото  или пастообразно  
вещество  на триене  между  стандартни  повърхности  при 
определени  условия  на натиск  и относителна  скорост  на 
движение . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Не са дадени . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Термична  чувствителност  (ефект  от пламък ) 
1.6.1.1.  Апаратура  
Апаратът  се състои  от стоманена  тръба  за еднократна  употреба  
със затварящи  приспособления  за многократна  употреба  (фигура  
1), инсталирана  в нагревателно  защитно  устройство . Всяка  тръба  
е направена  от лист  закалена  стомана  (вж. допълнението ) и има 
вътрешен  диаметър  24 mm, дължина  75 mm и дебелина  на 
стената  0,5 mm. На отворения  край  на тръбите  са монтирани  
фланци , които  позволяват  затварянето  на тръбите  с перфорирани  
плочи . Приспособлението  за затваряне  се състои  от плочка  с 
централен  отвор , устойчива  на високо  налягане , закрепена  
здраво  за тръбата  с помощта  на винтово  съединение  от две 
части  (гайка  и резбована  втулка ). Гайката  и резбованата  втулка  
са направени  от хромово -магнезиева  стомана  (вж. 
допълнението ), която  не дава искри  до 800  o С. Плочките  с 
отворите  са с дебелина  6 mm и са направени  от термоустойчива  
стомана  (вж. допълнението ). Те могат  да имат  различен  
диаметър  на отворите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 100
 
1.6.1.2.  Условия  на изпитването  
Обикновено  веществата  се изпитват  във вида , в който  са 
получени , макар  че в някои  случаи , например  ако са пресовани , 
в отлята  форма  или сбити  по някакъв  друг  начин , може  да се 
наложи  да се натрошат  преди  изпитването . 
За твърдите  вещества  количеството  материал , което  ще се 
използва  при всяко  изпитване , се определя  като се използва  
двуетапна  подготвителна  процедура . Празна  тръба  се напълва  
с 9 cm  3 вещество , което  се трамбова  със сила  80 N, 
приложена  към цялото  напречно  сечение  на тръбата . За по- 
голяма  безопасност  или ако физичната  форма  на пробата  може  
да се промени  при натиск , могат  да се използват  други  способи  
за пълнене  на тръбата , например  ако веществото  е много  чувств­  
ително  на триене , трамбоването  не е подходящо . Ако 
материалът  се свие , се прибавя  още от него  и отново  се 
трамбова , докато  тръбата  се изпълни  до височина  55 mm от 
горния  край . Определя  се масата  на веществото , необходима  
да запълни  тръбата  до това ниво  (55 mm). Още  на два пъти  се 
прибавя  по толкова  вещество , което  се трамбова  също  със сила  
80 N. След  това се прибавя  още материал  чрез трамбоване  или 
ако е необходимо , се изважда , докато  тръбата  се напълни  на 
височина  15 mm от горния  край . Провежда  се второ  пробно  
пълнене  на тръбата , като се започне  с една  трета  от колич­  
еството , използвано  за запълването  ѝ при първата  проба  
Прибавя  се още два пъти  същото  количество  вещество  при трам­  
боване  с 80 N и нивото  на веществото  се нагласява  на 15 mm от 
горния  край , като се добавя  или изважда  от материала . При 
следващите  изпитвания  се използва  количеството  вещество , 
определено  при второто  пробно  пълнене  на тръбата . Тръбата  
се пълни , като на три пъти  се прибавят  равни  количества  
вещество  и всеки  път обемът  на веществото  се довежда  до 
9 cm  3 чрез натиск  с каквато  сила  е необходима . (Процедурата  
може  да се улесни , като се използват  ограничителни  пръстени .) 
Течностите  и геловете  се изсипват  в тръбата  до височина  
60 mm, като се внимава , особено  при геловете , да не се 
образуват  кухини . Долният  край  на резбованата  втулка  се 
приплъзва  върху  тръбата , поставя  се подходяща  плочка  с 
отвор  и след  като се смаже  с малко  масло  на основата  на 
молибденов  дисулфид , гайката  се затяга . Важно  е да се 
провери  да няма  от изпитваното  вещество  между  фланеца  и 
пластинката , а също  и в гънките  на резбата . 
Нагряването  става  с пропан  от индустриална  бутилка , снабдена  
с регулатор  на налягането  (60 до 70 mbar) през дозатор . 
Пропанът  се разпределя  равномерно  (което  се разбира  
визуално , като се наблюдават  пламъците  на горелките ) чрез 
тръба  с разклонения  към четирите  горелки . Горелките  са разп­  
оложени  около  изпитателната  камера , както  е показано  на 
фигура  1. Четирите  горелки  общо  изразходват  около  3,2 литра  
пропан  на минута . Могат  да се използват  и други  горивни  газове  
и горелки , но скоростта  на нагряване  трябва  да бъде  такава , 
каквато  е описана  на фигура  3. При всички  апарати  скоростта  
на нагряване  трябва  да се проверява  периодично , като се 
използват  тръби , напълнени  с дибутилфталат , както  е отбелязано  
на фигура  3. 
1.6.1.3.  Провеждане  на изпитванията  
Всяко  изпитване  се провежда , докато  тръбата  се пръсне  на 
парчета . Ако това не стане , нагряването  продължава  не повече  
от пет минути . Изпитването , което  довежда  до фрагментиране  
на тръбата  на три или повече  парчета  (в някои  случаи  парчетата  
са свързани  помежду  си с тънки  ивици  метал , както  е показано  
на фигура  2), се отчита  като експлозия . За изпитване , при което  
се получават  по-малко  парчета  или изобщо  не настъпва  фрагме­  
нтация , се счита , че не е довело  до експлозия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 101
 
Най-напред  се прави  серия  от три изпитвания  с плочки  с 
диаметър  на отворите  6,0 mm. Ако не се получи  експлозия , се 
провежда  втора  серия  от три изпитвания  с диаметър  на отвора  
2,0 mm. Ако по време  и на двете  серии  от изпитвания  се 
получат  експлозии , не се правят  повече  изпитвания . 
1.6.1.4.  Оценка  на резултатите  
Изпитването  се счита  за положително , ако и при двете  описани  
по-горе серии  от изпитвания  се получат  експлозии . 
1.6.2.  Механична  чувствителност  (удар ) 
1.6.2.1.  Апарат  (фигура  4) 
Най-важните  части  на един  типичен  апарат  с падащ  чук са 
следните : блок  от лята стомана  с основа , наковалня , колона , 
водачи , подвижни  тежести , устройство  за освобождаване  и 
държател  на пробата . Стоманената  наковалня  с размери  
100 mm ( диаметър ) х 70 mm ( височина ) е завинтена  за горния  
край  на стоманен  блок  с размери  230 mm ( дължина ) х 250 mm 
(ширина ) х 200 mm ( височина ), който  има излята  основа  с 
размери  450 mm ( дължина ) х 450 mm ( ширина ) х 60 mm ( вис­  
очина ). Колона , направена  от закалена  стоманена  тръба  без 
спойки , е закрепена  здраво  с държател , завинтен  към задната  
част на стоманения  блок . Четири  винта  задържат  апарата  към 
монолитен  бетонен  блок  с размери  60 х 60 х 60 cm, така че 
водещите  релси  да са съвършено  вертикални  и подвижните  
тежести  да падат  свободно  (използват  се тежести  от 5 и 10 kg, 
направени  от плътна  стомана ). Удрящата  повърхност  на 
тежестите  е от закалена  стомана , HRC от 60 до 63 и има 
минимален  диаметър  25 mm.  
Измерваната  проба  е затворена  в ударно  устройство , съставено  
от два коаксиални  цилиндъра  от плътна  стомана , разположени  
един  над друг  в кух цилиндричен  водещ  жлеб  (също  от 
стомана ). Стоманените  цилиндри  трябва  да бъдат  с диаметър  
10 (- 0,003, - 0,005) mm и височина  10 mm, да имат  полирани  
повърхности , заоблени  краища  (радиус  на кривината  0,5 mm) и 
твърдост  на HRC от 58 до 65. Кухият  цилиндър  трябва  да бъде  с 
външен  диаметър  16 mm, полиран  отвор  от 10 (+ 0,005, + 0,010) 
mm и височина  13 mm. Ударното  устройство  е монтирано  върху  
междинна  наковалня  (26 mm диаметър  и 26 mm височина ), 
направена  от стомана  и центрована  с помощта  на пръстен  с 
отвори , които  позволяват  изпускането  на парите . 
1.6.2.2.  Условия  на изпитването  
Обемът  на пробата  трябва  да бъде  40 mm  3 или да е подходящо  
подбран  при използването  на алтернативни  апарати . Твърдите  
вещества  се измерват  в сухо  състояние  и трябва  да се 
подготвят  по следния  начин : 
а) стритите  вещества  се пресяват  през сито  с размер  на отворите  
0,5 mm; целият  материал , преминал  през ситото , се използва  
за изпитването ; 
б) пресованите , излети  или сбити  по друг  начин  вещества  се 
натрошават  на малки  парченца  и се пресяват ; пресетите  
частици  с размери  между  0,5 и 1 mm в диаметър  се 
използват  при изпитването  и се смятат  за представителна  
фракция  на първоначалното  вещество . 
Веществата , които  се доставят  в пастообразна  форма , се 
изпитват  в сухо  състояние . Ако това не е възможно , трябва  да 
се отстрани  колкото  може  по-голямо  количество  от разредителя . 
Течностите  се изпитват  като между  долния  и горния  стоманен  
цилиндър  се оставя  пролука  от 1 mm.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 102
 
1.6.2.3.  Провеждане  на изпитванията  
Провежда  се серия  от шест  изпитвания , като тежест  с тегло  
10 kg ce пуска  от височина  0,40 m (40 J). Ако при тези шест  
опита  се получи  експлозия , се провежда  нова  серия , също  от 
шест  изпитвания , но като маса  с тегло  5 kg ce пуска  от 
височина  0,15 m (7,5 J). В друг  апарат  пробата  се сравнява  с 
избрано  сравнително  вещество , като се използва  предварително  
установена  процедура  (например  техниката  up-and-down или 
друга ). 
1.6.2.4.  Оценка  на резултатите  
Резултатите  от изпитванията  се считат  за положителни , ако 
протече  експлозия  (избухване  в пламъци  или изгърмяване  се 
равняват  на експлозия ) поне  веднъж  при някой  от опитите  с 
утвърдения  апарат , или ако пробата  е по-чувствителна  от 1,3- 
динитробензен  или от циклонит  при алтернативен  начин  на 
изпитване . 
1.6.3.  Механична  чувствителност  (триене ) 
1.6.3.1.  Апарат  (фигура  5) 
Фрикционният  апарат  се състои  от основна  плоча , излята  от 
стомана , върху  която  е монтирано  фрикционното  устройство . 
То се състои  от фиксиран  порцеланов  пестик  и подвижна  
порцеланова  плочка . Порцелановата  плочка  е поставена  в 
шейна , която  се движи  в два водача . Шейната  е свързана  с 
електромотор  чрез свързващ  лост, ексцентрик  и подходяща  
зъбна  предавка , така че порцелановата  плочка  да се придвижва  
само  един  път назад  и напред  под пестика  на разстояние  10 mm. 
Порцелановият  пестик  може  да се натовари  например  със 120 
или 360 нютона . 
Плоската  порцеланова  плочка  се изработва  от бял технически  
порцелан  (грапавост  от 9 до 32 μm) и е с размери  25 mm 
(дължина ) х 25 mm ( ширина ) х 5 mm ( височина ). 
Цилиндричният  порцеланов  пестик  също  се прави  от бял техн­  
ически  порцелан  и е дълъг  15 mm, диаметърът  му е 10 mm, 
краищата  му са грапави  и имат  сферична  форма  с радиус  на 
кривината  10 mm.  
1.6.3.2.  Условия  на изпитването  
Обемът  на пробата  трябва  да бъде  10 mm  3 или друг  подходящ  за 
алтернативния  апарат . 
Твърдите  вещества  се измерват  в сухо  състояние  и се подготвят , 
както  следва : 
а) стритите  вещества  се пресяват  през сито  с размер  на отворите  
0,5 mm; целият  материал , преминал  през ситото , се използва  
за измерването ; 
б) пресованите , излети  или сбити  по друг  начин  вещества  се 
натрошават  на малки  парченца  и се пресяват ; пресетите  
частици  с размери  < 0,5 mm в диаметър  се използват  при 
изпитването . 
Веществата , които  обикновено  се доставят  в пастообразна  
форма , се изпитват , ако е възможно , в сухо  състояние . Ако 
веществото  не може  да се приготви  в сухо  състояние  (след  
отстраняване  на максималното  възможно  количество  от 
разредителя ), то се изпитва  под формата  на филм  с дебелина  
0,5 mm, ширина  2 mm и дължина  10 mm, направен  в матрица . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 103
 
1.6.3.3.  Провеждане  на изпитванията  
Порцелановият  пестик  се довежда  върху  изпитваната  проба  и се 
натоварва . По време  на изпитването  грапавините  на порцела­  
новата  плочка  трябва  да са разположени  напряко  на посоката  
на движението . Трябва  да се внимава  за следното : пестикът  да 
се опира  върху  пробата , под него  да има достатъчно  количество  
изпитван  материал  и плочката  да се придвижва  правилно  под 
пестика . Пастообразните  вещества  се нанасят  върху  плочката  с 
помощта  на уред  с дебелина  0,5 mm и прорез  с размери  2 х 
10 mm. Порцелановата  плочка  трябва  да изминава  10 mm 
напред  и назад  под пестика  за време  0,44 секунди . Всяка  от 
повърхностите  на плочката  и на пестика  се използва  само  
веднъж ; двата  края  на всеки  пестик  служат  за два опита , а 
всяка  от двете  повърхности  на плочката  служи  за три опита . 
Провежда  се серия  от шест  измервания  с товар  от 360 N. Ако по 
време  на тези шест  опита  се получи  положителен  резултат , се 
провежда  серия  от нови  шест  измервания  при натоварване  120 
N. При други  апарати  пробата  се сравнява  с избрано  
сравнително  съединение , като се използва  утвърдена  процедура  
(например  техниката  up-and-down или друга ). 
1.6.3.4.  Оценка  на резултатите  
Резултатът  от изпитването  се смята  за положителен , ако се 
получи  експлозия  (пращене  и/или гръм  или избухване  в 
пламъци  са равносилни  на експлозия ) поне  веднъж  при всеки  
от опитите  с утвърдената  фрикционна  апаратура , или ако задо­  
волява  еквивалентните  критерии  при алтернативно  изпитване . 
2. ДАННИ  
По принцип  се счита , че едно  вещество  е експлозивно  по 
смисъла  на директивата , ако е получен  положителен  резултат  
при изпитването  на термичната  чувствителност  или на чувствит­  
елността  при удар  или при триене . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ИЗПИТВАНЕ  
Протоколът  от изпитването  трябва  по възможност  да съдържа  
следната  информация : 
— вид, състав , чистота , съдържание  на влага  и т.н. на 
изпитваното  вещество , 
— физична  форма  на пробата  и дали  тя е била  натрошавана , 
чупена  и/или пресявана , 
— наблюдения  по време  на изпитванията  на термичната  чувств­  
ителност  (например  маса  на пробата , брой  на фрагментите  и 
др.), 
— наблюдения  при изпитването  на механичната  чувствителност  
(образуване  на значително  количество  дим или пълно  
разлагане  с взрив , пламъци , искри , гърмеж , прашене  и т.н.), 
— резултати  от всеки  вид изпитвания , 
— ако е използван  алтернативен  апарат , трябва  да се представи  
научна  обосновка , както  и доказателство  за корелацията  
между  резултатите , получени  с утвърдения  апарат , и тези, 
получени  с еквивалентния  апарат , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 104
 
— всички  полезни  коментари , като например  позоваване  на 
изпитвания  на подобни  продукти , които  може  да се 
отнасят  до правилното  интерпретиране  на резултатите , 
— всички  допълнителни  бележки , свързани  с интерпретирането  
на резултатите . 
3.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  И ОЦЕНКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
В протокола  от изпитванията  трябва  да са посочени  всички  
резултати , които  са сметнати  за погрешни , аномални  или 
непредставителни . Ако някой  от резултатите  е отхвърлен , 
трябва  да се даде  обяснение , както  и резултатите  от всички  
алтернативни  или спомагателни  изпитвания . В случай  че 
отхвърлянето  на даден  аномален  резултат  не може  да се 
обясни , той трябва  да се приеме  за действителен  и да се 
използва  при класифицирането  на веществото . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Recommendations on the Transport of Dangerous Goods: Tests 
and criteria, 1990, United Nations, New York.  
(2) Bretherick, L., Handbook of reactive Chemical Hazards, 4  th 
edition, Butterworths, London, ISBN 0-750-60103-5, 1990.  
(3) Koenen, H., Ide, K. H. and Swart, K. H., Explosivstoffe, 1961, 
vol. 3, 6-13 и 30-42.  
(4) NF T 20-038 (Sept. 85). Chemical products for industrial use — 
Determination of explosion risk.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 105
 
Допълнение  
Пример  за спецификация  на материалите  за изпитването  на 
термичната  чувствителност  (вж. DIN 1623)  
(1) Тръба : спецификации  на материалите  № 1.0336.505 g  
(2) Плочка  с отверстия : спецификация  на материалите  № 1.4873  
(3) Резбована  втулка  и гайка : спецификация  на материалите  № 1.3817  
Фигура  1 
Апарат  за измерване  на термичната  чувствителност  
(всички  размери  са в милиметри )
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 106
 
Фигура  2 
Изпитване  на термичната  чувствителност  
(примери  за фрагментиране )
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 107
 
Фигура  3 
Калибриране  на скоростта  на нагряване  за изпитването  на термичната  чувствителност
  
Крива  температура /време , получена  при нагряването  на дибутилфталат  (27 cm  3 ) в 
затворена  тръба  (с плоча  с отвор  1,5 mm) посредством  пропанов  пламък  със скорост  
3,2 l/min. Температурата  е измерена  с хромалумелова  термодвойка , обшита  с неръждаема  
стомана  с диаметър  1 mm и разположена  централно  на разстояние  43 mm под пръстена  
на тръбата . Скоростта  на нагряване  между  135  o С и 285  o С трябва  да бъде  между  185 и 
215 K/минута . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 108
 
Фигура  4 
Апарат  за изпитване  на удар  
(всички  размери  са в милиметри )
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 109
 
Фигура  4 
Продължение
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 110
 
Фигура  5 
Апарат  за чувствителност  при триене
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 111
 
А.15. ТЕМПЕРАТУРА  НА САМОЗАПАЛВАНЕ  (ТЕЧНОСТИ  И 
ГАЗОВЕ ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Това  изпитване  не се отнася  за експлозивни  вещества , както  и за 
веществата , които  се самозапалват  при контакт  с въздуха  на 
стайна  температура . Процедурата  за изпитване  е приложима  за 
газове , течности  и пари , които  в присъствието  на въздух  могат  
да се запалят  от нагорещена  повърхност . 
Температурата  на самозапалване  може  да бъде  понижена  знач­  
ително  при използване  на примеси  с каталитични  свойства , от 
материала  на нагорещената  повърхност  или поради  това, че 
обемът  на измервателния  съд е твърде  голям . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Степента  на самозапалване  се изразява  чрез температурата  на 
самозапалване . Температурата  на самозапалване  е най-ниската  
температура , при която  изпитваното  вещество  се запалва , 
смесвайки  се с въздух  при условията , определени  в метода . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Веществата  за сравнение  са посочени  в стандартите  (вж. 1.6.3). 
Преди  всичко  те трябва  да служат  за периодична  проверка  на 
ефикасността  на метода , както  и да позволяват  сравнение  с 
резултатите , получени  по други  методи . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Методът  определя  минималната  температура  на вътрешната  
повърхност  на затворен  съд, която  води  до запалването  на газ, 
пара  или течност , впръскани  в съда . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Точността  зависи  от областта , в която  се намира  температурата  
на самозапалване , както  и от използвания  метод  за изпитване . 
Чувствителността  и специфичността  зависят  от използвания  
метод  за изпитване . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Апаратура  
Апаратурата  е описана  в метода , посочен  в 1.6.3.  
1.6.2.  Условия  на изпитването  
Проба  от изпитваното  вещество  се изпитва  по метода , посочен  
в 1.6.3.  
1.6.3.  Провеждане  на изпитването  
Вж. IEC 79-4, DIN 51794, ASTM-E 659-78, BS 4056, NF Т 
20-037.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 112
 
2. ДАННИ  
Записват  се температурата  на изпитването , атмосферното  
налягане , използваното  количество  от пробата  и времето  до 
момента  на запалването . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  с резултатите  от изпитването  трябва  по възможност  
да съдържа  следната  информация : 
— точно  идентифициране  на веществото  (вид и примеси ), 
— количество  на пробата ; атмосферното  налягане , 
— използван  апарат , 
— резултати  от изпитванията  (температури , при които  са 
проведени  изпитванията , резултати , свързани  със 
запалването ; съответни  времена  до запалването ), 
— всички  допълнителни  бележки , свързани  с интерпретирането  
на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
Няма . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 113
 
А.16. ОТНОСИТЕЛНА  ТЕМПЕРАТУРА  НА САМОЗАПАЛВАНЕ  
НА ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Това  изпитване  не се отнася  за експлозивни  вещества , както  и за 
вещества , които  се самозапалват  при контакт  с въздух  на стайна  
температура . 
Целта  на това изпитване  е да се осигури  предварителна  
информация  за самозапалването  на твърдите  вещества  при 
повишаване  на температурата . 
Ако топлината , която  се отделя  при взаимодействие  на 
веществото  с кислород  или при екзотермичното  му разлагане , 
не се разсейва  достатъчно  бързо  в околната  среда , се получава  
самонагряване , което  води  до самозапалване . Следователно  
самозапалване  настъпва , когато  скоростта  на топлопроизво­  
дството  е по-висока  от скоростта  на топлоотделянето . 
Процедурата  за изпитване  се използва  като предварителен  
скрийнинг -метод  за твърди  вещества . Като  се има предвид  
сложната  същност  на процесите  на запалване  и изгаряне  на 
твърди  вещества , определената  по този метод  температура  на 
самозапалване  трябва  да се използва  само  за сравнителни  цели . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Температурата  на самозапалване , получена  по този метод , е 
минималната  температура  на околната  среда  в o С, при която  
определено  количество  вещество  ще се запали  при определени  
условия . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Определено  количество  от изпитваното  вещество  се поставя  в 
пещ при стайна  температура ; записва  се крива  температура /­ 
време , регистрираща  условията  в средата  на пробата , докато  
температурата  на пещта  се повиши  до 400  o С (или до точката  
на топене  на веществото , ако тя е по-ниска ) при скорост  на 
повишаване  0,5  o C/min. Във връзка  с целта  на това изпитване  
температурата  на пещта , при която  температурата  на пробата  
достигне  400  o С чрез самонагряване , се нарича  температура  на 
самозапалване . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Апаратура  
1.6.1.1.  Пещ  
Температурно  програмирана  лабораторна  пещ (вместимост  
около  2 литра ), снабдена  с устройство  за въздушна  циркулация  
и обезопасена  срещу  експлозии . За да се избегне  потенциалната  
опасност  от взрив , отделените  при разлагането  на веществото  
газове  не бива  да влизат  в контакт  с електронагревателните  
елементи . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 114
 
1.6.1.2.  Куб от телена  мрежа  
Парче  от телена  мрежа  с размер  на отворите  0,045 mm, 
направена  от неръждаема  стомана , се изрязва  по начина , 
показан  на фигура  1. Мрежата  се сгъва  под формата  на куб с 
открит  горен  край  и се закрепва  с тел. 
1.6.1.3.  Термодвойки  
Подходящи  термодвойки . 
1.6.1.4.  3аписващо  устройство  
Двуканално  записващо  устройство  от 0 до 600  o С или за съотв­  
етното  напрежение . 
1.6.2.  Условия  на изпитването  
Веществата  се изпитват  във вида , в който  са получени . 
1.6.3.  Провеждане  на изпитването  
Кубът  се напълва  с изпитваното  вещество , стръсква  се вним­  
ателно  и се прибавя  още вещество , докато  се напълни  догоре . 
След  това кубът  се окачва  в центъра  на пещта  при стайна  
температура . Едната  от термодвойките  се поставя  в центъра  на 
куба , а другата  — между  куба  и стената  на пещта , за да се 
отчита  температурата  на пещта . 
Температурите  на пещта  и на пробата  се записват  непрекъснато , 
докато  температурата  на пещта  се повишава  до 400  o С или до 
точката  на топене  (ако е по-ниска ) при скорост  на повишаване  
0,5 o C/min.  
Когато  веществото  се запали , термодвойката , поставена  в него , 
ще покаже  много  рязко  повишаване  на температурата  над тази 
на пещта . 
2. ДАННИ  
За оценяване  се използва  температурата  на пещта , при която  
температурата  на пробата  достигне  400  o С чрез самонагряване  
(вж. фигура  2). 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  с резултатите  от изпитването  трябва  по възможност  
да съдържа  следната  информация : 
— описание  на изпитваното  вещество , 
— резултати  от изпитванията , включително  кривата  
температура /време , 
— всички  допълнителни  бележки , свързани  с интерпретирането  
на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
NF T 20-036 (Sept. 85). Chemical products for industrial use. Deter ­
mination of the relative temperature of the spontaneous flammability 
of solids.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 115
 
Фигура  1 
Модел  на измервателния  куб с дължина  на страната  20 mm
  
Фигура  2 
Типична  крива  температура /време
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 116
 
А.17. ОКСИДИРАЩИ  СВОЙСТВА  (ТВЪРДИ  ВЕЩЕСТВА ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Преди  да се проведе  това изпитване , ще е от полза  да има 
предварителна  информация  за евентуалните  експлозивни  
свойства  на веществото . 
Методът  е неприложим  за течности , газове , експлозивни  или 
леснозапалими  вещества , както  и за органични  пероксиди . 
Провеждането  на това изпитване  не е необходимо , когато  
проучването  на структурната  формула  показва  без съмнение , 
че веществото  не реагира  екзотермично  с горивни  материали . 
За да се разбере  дали  изпитването  трябва  да се провежда  при 
специални  мерки  за сигурност , е необходимо  да се направи  
предварително  изпитване . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Време  на изгаряне : реакционното  време  в секунди , необходимо  
на зоната , в която  протича  реакцията , да премине  по 
цялата  дължина  на образеца  в съответствие  с процедурата , 
описана  в 1.6.  
Скорост  на изгаряне : изразява  се в милиметри  за секунда . 
Максимална  скорост  на изгаряне : най-високата  стойност  на 
скоростта  на изгаряне , получена  при смеси , съдържащи  от 10 
до 90 тегл. % окислител . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
За изпитването , както  и за предварителното  изпитване , като 
вещество  за сравнение  се използва  бариев  нитрат  с аналитична  
чистота . 
Приготвената  съгласно  точка  1.6 смес  от бариев  нитрат  и прахо­  
образна  целулоза  се използва  като смес  за сравнение . Тя има 
максимална  скорост  на изгаряне  (обикновено  това е смес , 
съдържаща  60 тегл. % бариев  нитрат ). 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
С оглед  на безопасността  се провежда  предварително  изпитване . 
Ако предварителното  изпитване  покаже  ясно , че изпитваното  
вещество  притежава  оксидиращи  свойства , не е необходимо  да 
се провеждат  повече  изпитвания . В противен  случай  веществото  
се подлага  на пълната  процедура  за изпитване . 
При пълното  изпитване  изпитваното  вещество  и определено  
горивно  вещество  се смесват  в различни  съотношения . След  
това от всяка  смес  се оформя  купчинка , която  се запалва  от 
единия  край . Така  определената  максимална  скорост  на 
изгаряне  се сравнява  с тази на сравнителната  смес . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Всеки  метод  на стриване  и смесване  се приема  за валиден , в 
случай  че максималната  скорост  на изгаряне  при шест  отделни  
опита  се различава  от средноаритметичната  с не повече  от 10 %.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 117
 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.6.1.  Подготовка  
1.6.1.1.  Изпитвано  вещество  
Размерът  на частиците  на изпитваното  вещество  се намалява  до 
< 0,125 mm по следния  начин : веществото  се пресява , 
остатъчната  фракция  се стрива  и тази процедура  се повтаря , 
докато  цялата  проба  премине  през ситото . 
Може  да се използват  всякакви  методи  на стриване  и пресяване , 
стига  те да са в съответствие  с критериите  за качество . 
Преди  да се приготви  сместа , веществото  се суши  при 105  o С до 
достигане  на постоянно  тегло . Ако температурата  на разлагане  
на изпитваното  вещество  е по-ниска  от 105  o С, то се суши  при 
подходяща  по-ниска  температура . 
1.6.1.2.  Горивно  вещество  
Като  горивно  вещество  се използва  прахообразна  целулоза . 
Целулозата  трябва  да бъде  от вид, използван  за тънкослойна  
или за колонна  хроматография . Целулоза  с дължини  на 
нишките , по-големи  от 85 % между  0,020 и 0,075 mm, е 
подходяща  за целта . Разпрашената  целулоза  се прокарва  през 
сито  с размер  на порите  0,125 mm. По време  на цялото  
изпитване  се използва  една  и съща  партида  целулоза . 
Преди  приготвянето  на сместа  прахообразната  целулоза  се суши  
при 105  o С до постоянно  тегло . 
Ако при предварителното  изпитване  се използва  дървесно  
брашно , то трябва  да се приготви  от влажна  дървесина , като 
се събере  порцията , която  преминава  през сито  с размер  на 
отворите  1,6 mm, разбърква  се добре  и се суши  4 часа при 
105  o С на пласт , не по-дебел  от 25 mm. След  това се охлажда  
и се съхранява  до употребата  в обезвъздушен  контейнер , 
запълнен  колкото  е възможно  повече . За предпочитане  е да се 
използва  в рамките  на 24 часа след  сушенето . 
1.6.1.3.  Източник  на възпламеняване  
Като  източник  на възпламеняване  се използва  горещ  пламък  от 
газова  горелка  (минимален  диаметър  5 mm). Ако се използва  
друг  източник  (например  при изпитване  в инертна  атмосфера ), 
той трябва  да се опише  и използването  му да се обоснове . 
1.6.2.  Провеждане  на изпитването  
Забележка : 
Смесите  от окислители  и целулоза  или дървесно  брашно  трябва  
да се третират  като потенциално  експлозивни  и с тях да се 
работи  със съответното  внимание . 
1.6.2.1.  Предварително  изпитване  
Сухото  вещество  се смесва  добре  с изсушената  целулоза  или 
дървесно  брашно  в тегловно  съотношение  2 към 1 и сместа  се 
оформя  като малка  конусовидна  купчинка  с размери  3,5 cm 
(диаметър  на основата ) х 2,5 cm ( височина ). Оформянето  на 
купчинката  става  чрез пълнене  и трамбоване  в конусообразна  
матрица  (например  лабораторна  стъклена  фуния  със запушен  
ствол ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 118
 
Купчинката  се поставя  върху  хладка  незапалима  гладка  плоча  с 
ниска  топлопроводимост . Изпитването  се провежда  във вент­  
илационен  шкаф , както  е описано  в 1.6.2.2.  
Източникът  на възпламеняване  се допира  до конуса . Интензив­  
ността  и продължителността  на получената  реакция  се набл­  
юдават  и записват . 
Ако реакцията  е бурна , веществото  се счита  за оксидиращо . 
В случай  че резултатът  буди  съмнение , е необходимо  да се 
проведе  цялата  поредица  от процедури , описана  по-долу . 
1.6.2.2.  Последователност  на изпитвателните  процедури  
Приготвят  се смеси  от сухото  вещество  и целулозата  със 
съдържание  на сухо  вещество  от 10 до 90 тегл. %, като конце­  
нтрацията  на веществото  нараства  с по 10 % при всяка  следваща  
смес . В случай  че резултатите  са на границата  на две конце­  
нтрации , за да се получи  по-точна  стойност  на максималната  
скорост  на изгаряне , трябва  да се приготвят  и смеси  с 
междинно  съдържание . 
Купчинката  се оформя  с помощта  на матрица . Матрицата  е 
направена  от метал , има дължина  250 mm, триъгълно  
напречно  сечение  с височина  10 mm и вътрешна  ширина  
20 mm. От двете  страни  на матрицата  в надлъжна  посока  се 
монтират  две метални  пластинки  като латерални  ограничители , 
които  изпъкват  с по 2 mm над горния  край  на триъгълното  
сечение  (вж. фигурата ). В това приспособление  се насипва  
свободно  малък  излишък  от сместа . След  като матрицата  се 
пусне  веднъж  от височина  2 cm върху  твърда  повърхност , 
излишното  вещество  се изстъргва  с помощта  на наклонен  
лист , латералните  ограничители  се снемат  и останалият  прах  
се заглажда  с валяк . След  това върху  матрицата  се поставя  
плоча  от незапалим  непорьозен  материал  с ниска  топлопровод­  
имост , приспособлението  се обръща  и матрицата  се отстранява . 
Купчинката  се поставя  срещу  въздушен  поток  във вент­  
илационен  шкаф . 
Скоростта  на въздушния  поток  трябва  да е достатъчно  висока , за 
да се избегне  проникването  на дим в лабораторията . Тя не бива  
да се променя  по време  на изпитването . Около  апарата  се издига  
защитен  екран . 
Тъй като целулозата , както  и някои  изпитвани  вещества , са 
хигроскопични , изпитването  трябва  да се проведе  колкото  е 
възможно  по-бързо . 
Единият  край  на купчинката  се запалва  чрез допиране  на 
пламък . 
След  като зоната  на реакцията  се разпространи  на първоначално  
разстояние  от 30 mm, ce измерва  времето  на реакцията  за 
следващите  200 mm.  
Провежда  се изпитване  със сравнително  вещество  и поне  по 
едно  изпитване  със смесите  на веществото  с целулоза  с конце­  
нтрации  в определената  област . 
Ако максималната  скорост  на изгаряне  се окаже  значително  по- 
висока  от тази на сместа  за сравнение , изпитването  се 
прекратява ; в противен  случай  то се провежда  по пет пъти  за 
всяка  от трите  смеси  с най-високи  скорости  на изгаряне . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 119
 
Ако има съмнение , че полученият  положителен  резултат  не е 
реален , изпитването  трябва  да се повтори , като вместо  
целулоза  се използва  инертно  вещество  с подобен  размер  на 
частиците , например  кизелгур . Също  така изпитването  на 
сместа  (изпитвано  вещество -целулоза ) с най-висока  скорост  на 
изгаряне  трябва  да се повтори  в инертна  атмосфера  (< 2 об. % 
съдържание  на кислород ). 
2. ДАННИ  
От съображения  за безопасност  като характеристика  за 
оксидиращите  свойства  на изпитваното  вещество  се приема  
максималната  скорост  на изгаряне , а не средната  стойност  на 
скоростта  на изгаряне . 
За оценяване  се използва  най-високата  стойност  на скоростта  на 
изгаряне , получена  след  шест  опита  с определена  смес . 
Начертава  се графика  на най-високите  стойности  на скоростта  
на изгаряне  за всяка  смес  към концентрациите  на окислителя . От 
графиката  се снема  максималната  скорост  на изгаряне . 
Шестте  измерени  стойности  на скоростта  на изгаряне , получени  
при един  опит  със сместа  с най-висока  скорост  на изгаряне , не 
трябва  да се различават  от средноаритметичната  стойност  с 
повече  от 10 %; в противен  случай  методите  на стриване  и 
смесване  трябва  да се подобрят . 
Сравнява  се получената  максимална  скорост  на изгаряне  с тази 
на сравнителното  вещество  (вж. 1.3).  
Ако изпитванията  се провеждат  в инертна  атмосфера , максим­  
алната  скорост  на реакцията  се сравнява  с тази на сместа  за 
сравнение  също  в инертна  атмосфера . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  по възможност  да съдържа  
следната  информация : 
— вид, състав , чистота , влагосъдържание  и т.н. на изпитваното  
вещество , 
— всяка  обработка  на изпитваното  вещество  (например  
стриване , сушене  и т.н.), 
— източник  на възпламеняване , използван  при изпитването , 
— резултати  от изпитванията , 
— начин  на протичане  на реакцията  (например  пламък , горящ  
на повърхността , изгаряне  в цялата  маса  на веществото , 
информация , свързана  с продуктите  на изгарянето ), 
— всички  допълнителни  бележки  относно  интерпретацията  на 
резултатите , включително  описание  на интензивността  на 
реакцията  (пламъци , искри , дим, бавно  тлеене  и т.н.) и 
приблизителната  продължителност , получена  при 
предварителния  скрийнинг , както  за изпитваното , така и за 
сравнителното  вещество , 
— резултати  от изпитвания  с инертно  вещество , ако има такива , 
— резултати  от изпитвания  в инертна  атмосфера , ако има 
такива . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 120
 
3.2. АНАЛИЗ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Едно  вещество  се счита  за оксидиращо , когато : 
а) при предварителното  изпитване  е протекла  бурна  реакция ; 
б) при провеждането  на пълното  изпитване  максималната  
скорост  на изгаряне  на изпитваните  смеси  е по-голяма  или 
равна  на максималната  скорост  на изгаряне  на сместа  
целулоза -бариев  нитрат , използвана  за сравнение . 
За да се избегне  получаването  на неверни  положителни  
резултати , получените  при изпитване  на смесеното  с инертен  
материал  вещество  и/или при изпитване  в инертна  атмосфера  
данни  също  трябва  да се вземат  предвид  при интерпретиране  
на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
NF T 20-035 (Sept. 85). Chemical products for industrial use. Deter ­
mination of the oxidizing properties of solids.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 121
 
Допълнение  
Фигура  
Матрица  и спомагателни  приспособления  за приготвяне  на купчинката  
(всички  размери  са в милиметри )
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 122
 
А.18. СРЕДНО  БРОЙНО  МОЛЕКУЛНО  ТЕГЛО  И РАЗПРЕД­  
ЕЛЕНИЕ  НА МОЛЕКУЛНОТО  ТЕГЛО  НА ПОЛИМЕРИ  
1. МЕТОД  
Този  хроматографски  метод  с гел инфилтрация  е точно  копие  на 
метода  ОИСР  TG 118 (1996 г.). Основните  принципи  и по- 
подробна  техническа  информация  са дадени  в препратка  (1). 
1.1. УВОД  
Тъй като свойствата  на полимерите  са много  разнообразни , не e 
възможно  да се опише  един -единствен  метод , установяващ  
точно  условията  за сепарация  и оценка , който  да обхваща  
възможностите  и спецификата , които  се получават  при 
сепарацията  на полимерите . В частност  сложните  полимерни  
системи  често  не се поддават  на хроматография  с гел 
инфилтрация  (GPC). Когато  GPC е неприложима , молекулното  
тегло  се определя  с помощта  на други  методи  (виж 
допълнението ). В такива  случаи  пълните  подробности  и 
оценката  се правят  на базата  на използвания  метод . 
Описаният  метод  се базира  на DIN стандарта  55672 (1). В този 
DIN стандарт  може  да се намери  подробна  информация  как да 
се извършат  изпитванията  и как да се оценят  данните . В случай  
че са необходими  модификации  на експерименталните  условия , 
тези промени  трябва  да бъдат  оправдани . Могат  да се използват  
и други  стандарти , ако са напълно  подходящи . Описаният  метод  
използва  проби  от полистирол  с позната  полидисперсност  за 
калибровка  и може  да се наложи  да бъде  променен , с цел да 
бъде  подходящ  за определени  полимери , например  водоразт­  
ворими  полимери  и полимери  с дълги  разклонени  вериги . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Средното  бройно  молекулно  тегло  М n и средното  тегловно  
молекулно  тегло  M  w ce определят  с помощта  на следните  
уравнения : 
M n ¼ Σ n 
i ¼ 1 H i 
Σ n 
i ¼ 1 H i=M i M w ¼ Σ n 
i ¼ 1 H i Ü M i 
Σ n 
i ¼ 1 H i 
където : 
H i = нивото  на детекторния  сигнал  от базовата  линия  на обема  
на задържане  V i , 
M i = молекулното  тегло  на полимерната  фракция  при обема  на 
задържане  V i , и 
n = броя  на точките  с данни . 
Широчината  на разпределение  на молекулното  тегло , която  е 
мярка  за дисперсността  на системата , се изразява  чрез съотнош­  
ението  M w /M n . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 123
 
1.3. ЕТАЛОННИ  ВЕЩЕСТВА  
Тъй като GPC е относителен  метод , трябва  да се извърши  
калибровка . За целта  обикновено  се използват  полистиролови  
стандарти  с линеен  строеж  и тясно  разпределение , с известни  
средни  молекулни  тегла  М n и M  w и известно  молекулно  
тегловно  разпределение . Калибрационната  крива  може  да се 
използва  само  при определяне  на молекулното  тегло  на 
непозната  проба , ако условията  за разделяне  на пробата  и 
стандартите  са били  подбрани  по идентичен  способ . 
Една  установена  връзка  между  молекулното  тегло  и елуиращия  
обем  е валидна  само  при специфичните  условия  на даденото  
изпитване . Условията  включват  преди  всичко  температурата , 
разтворителя  (или сместа  от разтворители ), хроматографските  
условия  и сепарационната  колона  или система  от колони . 
Молекулните  тегла  на пробата , определени  по този начин , са 
относителни  стойности  и се описват  като „полистиролови  еквив­  
алентни  молекулни  тегла “. Това  означава , че в зависимост  от 
структурните  и химическите  различия  между  пробата  и 
стандартите , молекулните  тегла  могат  да се отклоняват  от 
абсолютните  стойности  в по-голяма  или по-малка  степен . Ако 
се използват  други  стандарти , например  полиетиленгликол , 
полиетиленов  окис , полиметил  метакрилат , полиакрилна  
киселина , трябва  да се посочи  причината  за това. 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Както  разпределението  на молекулното  тегло  на пробата , така и 
нейните  средни  молекулни  тегла  (M  n , M  w ) могат  да се определят  
чрез GPC. GPC е специален  тип течна  хроматография , при която  
пробата  се сепарира  според  хидродинамичните  обеми  на 
отделните  съставни  части  (2). 
Сепарацията  се извършва , като пробата  преминава  през колона , 
която  е пълна  с порест  материал , обикновено  органичен  гел. 
Малките  молекули  могат  да проникват  през порите , докато  
големите  молекули  не могат . Следователно  пътеката  на по- 
големите  молекули  е по-къса  и те елуират  първи . Молекулите  
със среден  размер  проникват  през някои  от порите  и елуират  по- 
късно . Най-малките  молекули , със среден  хидродинамичен  
радиус , по-малък  от този на порите  на гела, могат  да 
проникват  през всички  пори . Те елуират  последни . 
В идеалния  случай  сепарацията  се контролира  изцяло  от размера  
на молекулните  видове , но на практика  е трудно  да се избегнат  
поне  някои  от абсорбционните  ефекти , които  смущават  процеса . 
Неравномерната  облицовка  на колоната  и мъртвите  обеми  могат  
да влошат  ситуацията  (2). 
Детекцията  се извършва  например  чрез рефрактивен  индекс  или 
UV-абсорбция  и се получава  проста  крива  на разпределението . 
За да се прибавят  обаче  действителните  стойности  на молек­  
улните  тегла  към кривата , е необходимо  да се калибрира  
колоната , като през нея се пуснат  полимери  с познато  
молекулно  тегло  и в идеалния  случай , с доста  широка  подобна  
структура , например  различни  полистиролови  стандарти . 
Резултатът  е типична  крива  на Gaussian, на места  изкривена  от 
малка  опашка  по посока  на страната  с ниско  молекулно  тегло , 
като вертикалната  ос показва  количеството  по тегло  на разл­  
ичните  елуирани  видове  молекулни  тегла , а хоризонталната  ос 
показва  регистрираното  молекулно  тегло . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 124
 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Повторяемостта  (относителното  стандартно  отклонение  — 
Relative Standard Deviation (RSD) на елуиращия  обем  трябва  да 
бъде  по-добра  от 0,3 %. Желаната  повторяемост  на анализа  
трябва  да се гарантира  чрез корекция  през вътрешен  стандарт , 
ако хроматограмата  се оценява  в зависимост  от времето  и не 
отговаря  на горепосочените  критерии  (1). Полидисперсностите  
зависят  от молекулните  тегла  на стандартите . В случая  с 
полистироловите  еталони  типичните  стойности  са: 
M p < 2 000 M  w /M n < 1,20 
2 000 ≤ M p ≤ 10 6 M w /M n < 1,05 
M p > 10  6 M w /M n < 1,20  
(М р е молекулното  тегло  на еталона  при максималния  пик) 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА ИЗПИТВАТЕЛНИЯ  МЕТОД  
1.6.1.  Подготовка  на стандартните  полистиролови  разтвори  
Полистироловите  стандарти  се разтварят  чрез внимателно  
смесване  в избрания  елуент . При подготовката  на разтворите  
трябва  да се вземат  предвид  препоръките  на производителя . 
Концентрациите  на избраните  стандарти  зависят  от различни  
фактори , например  обем  на инжектиране , вискозитет  на 
разтвора  и чувствителност  на аналитичния  детектор . Максим­  
алният  обем  на инжектиране  трябва  да се адаптира  към 
дължината  на колоната , с цел да се избегне  претоварване . 
Типичните  обеми  на инжектиране  за аналитична  сепарация  
чрез GPC с колона  30 cm х 7,8 mm обикновено  са между  40 и 
100 μl. Възможни  са и по-големи  обеми , но те не трябва  да 
превишават  250 μl. Оптималното  съотношение  между  обема  на 
инжектиране  и концентрацията  трябва  да се определи  преди  
действителната  калибровка  на колоната . 
1.6.2.  Подготовка  на разтвора  проба  
Принципно  при подготовката  на разтворите  проби  се прилагат  
същите  изисквания . Мострата  се разтваря  в подходящ  разт­  
ворител , например  тетрахидрофуран  (THF), чрез старателно  
разклащане . Тя не трябва  при никакви  обстоятелства  да се 
разтваря  с помощта  на ултразвукова  баня . Когато  е необходимо , 
разтворът  проба  се пречиства  през мембранен  филтър  с размер  
на порите  между  0,2 и 2 μm. 
Присъствието  на неразтворени  частици  трябва  да се отчете  във 
финалния  протокол , тъй като тези частици  може  да се дължат  на 
високомолекулни  видове . Трябва  да се използва  подходящ  метод  
за определяне  процента  на теглото  на разтворените  частици . 
Разтворите  трябва  да се използват  в рамките  на 24 часа. 
1.6.3.  Апаратура  
— резервоар  за разтворител , 
— дегазатор  (когато  е уместно ), 
— помпа , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 125
 
— гасител  на пулсации  (когато  е уместно ), 
— инжекторна  система , 
— хроматографски  колони , 
— детектор , 
— разходомер  за дебит  (когато  е уместно ), 
— процесор -рекордер  за данни , 
— съд за отпадъци . 
Трябва  да се гарантира , че GPC системата  е инертна  по 
отношение  на използваните  разтворители  (например  чрез 
използване  на стоманени  капиляри  за THF-разтворителя ). 
1.6.4.  Система  за инжектиране  и подаване  на разтворител  
Към колоната  се подава  определен  обем  разтвор  на пробата , 
автоматично  или ръчно , в строго  определена  зона. Твърде  
бързото  издърпване  или натискане  на буталото  на помпата , 
ако се прави  ръчно , може  да причини  промени  в наблюдаваното  
разпределение  на молекулното  тегло . Системата  за подаване  на 
разтворител  трябва , доколкото  е възможно , да няма  пулсации , 
включвайки  гасител  на пулсации  в идеалния  случай . Дебитът  е 
от порядъка  на 1 ml/min.  
1.6.5.  Колона  
В зависимост  от пробата  полимерът  може  да се охарактеризира  
или с помощта  на проста  колона , или чрез няколко  колони , 
свързани  последователно . На пазара  се предлагат  порести  
материали  за колони  с определени  свойства  (например  размер  
на порите , лимити  на изключване ). Изборът  на сепарационен  гел 
или на дължина  на колоната  зависи  както  от свойствата  на 
пробата  (хидродинамични  обеми , разпределение  на молекулното  
тегло ), така и от специфичните  условия  за сепарация  като разт­  
ворител , температура  и дебит  (1) (2) (3).  
1.6.6.  Теоретични  пластини  
Колоната  или комбинацията  от колони , използвани  за сепарация , 
трябва  да се охарактеризират  чрез броя  на теоретичните  
пластини . Това  включва , в случая  на THF като елуиращ  разт­  
ворител , подаване  на разтвор  на етилбензол  или друг  подходящ  
неполярен  разтвор  към колона  с позната  дължина . Броят  на 
теоретичните  пластини  се определя  чрез следното  уравнение : 
N ¼ 5; 54 Í 
V e 
W 1=2 Î 2 
или: N ¼ 16 V e 
W Í Î  2 
където : 
N = броя  на теоретичните  пластини  
V e = елуиращия  обем  при максималния  пик ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 126
 
W = пика  на широчината  на базовата  линия  
W 1/2 = пиковата  широчина  при половин  височина . 
1.6.7.  Сепарационна  производителност  
Освен  броя  на теоретичните  пластини , който  е количество , 
определящо  широчината  на зоната , известна  роля  играе  и 
сепарационната  производителност , която  се определя  от стръм­  
ността  на калибрационната  крива . Сепарационната  производит­  
елност  на една  колона  се получава  от следната  зависимост : 
V ey; M x Ä V eyð10M  x Þ 
площма  на напречномо  сечение  на колоната  ≥ 6; 0 cm 2 
cm 3 " #  
където : 
V ey, Mx  = елуиращия  обем  за полистирол  с молекулно  тегло  
М х 
V ey(10Mx)  = елуиращия  обем  за полистирол  с 10 пъти  по-голямо  
молекулно  тегло . 
Резолюцията  на системата  обикновено  се определя , както  
следва : 
R 1;2 ¼ 2 Ü V e1 Ä V e2 
W 1 þ W 2 Ü 1 
log 10 ðM 2=M 1 Þ 
където : 
V e1 , V e2 = елуиращите  обеми  на двата  полистиролови  
стандарта  в максималния  пик 
W 1 , W  2 = пиковите  широчини  в базовата  линия  
M 1 , M  2 = молекулните  тегла  в максималния  пик (трябва  да се 
различават  с коефициент  10).  
R-стойността  на системата  колони  трябва  да бъде  по-голяма  от 
1,7 (4).  
1.6.8.  Разтворители  
Всички  разтворители  трябва  да бъдат  с висока  чистота  (за THF 
ce използва  чистота  99,5 %). Резервоарът  за разтворител  (ако е 
необходимо  в атмосфера  от инертен  газ) трябва  да е достатъчно  
голям  за калибровката  на колоната  и няколко  анализа  на проби . 
Разтворителят  трябва  да се дегазира , преди  да бъде  транс­  
портиран  през помпата . 
1.6.9.  Температурен  контрол  
Температурата  на критичните  вътрешни  компоненти  
(инжекторна  верига , колони , детектор  и тръбна  инсталация ) 
трябва  да бъде  постоянна  и съвместима  с избора  на разтворител . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 127
 
1.6.10.  Детектор  
Предназначението  на детектора  е да отчита  количествено  конце­  
нтрацията  на пробата , елуирала  от колоната . С цел да се избегне  
ненужното  разширяване  на пиковете , обемът  на кюветката  на 
детекторната  клетка  трябва  да се поддържа  възможно  най- 
малък . Той не трябва  да бъде  по-голям  от 10 μ1, освен  при 
разсейване  и детектори  за вискозитет . За детекция  обикновено  
се използва  диференциална  рефрактометрия . Въпреки  това, ако 
специфичните  свойства  на пробата  или на елуиращия  разтвор  го 
изискват , може  да се използват  други  видове  детектори , 
например  UV/VIS, IR, детектори  за вискозитет  и т.н. 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. Данни  
Подробните  оценъчни  критерии , както  и изискванията  
относно  събирането  и обработката  на данни , са посочени  в 
DIN стандарт  (1). 
За всяка  проба  трябва  да се извършат  два независими  опита . Те 
се анализират  индивидуално . 
При всяко  измерване  се обезпечават  M  n , M  w , M  w /M n и М р . 
Необходимо  е изрично  да се посочи , че измерените  стойности  
са относителни  стойности , еквивалентни  на молекулните  тегла  
на използвания  стандарт . 
След  определяне  на обемите  на задържане  или времената  на 
задържане  (които  може  да са коригирани  чрез вътрешен  
стандарт ), регистрираните  М р стойности  (М р като максимален  
пик на калибрационния  стандарт ) се изчертават  спрямо  едно  
от тези количества . Необходими  са поне  две калибрационни  
точки  за десет  молекулни  тегла  и поне  пет измервателни  
точки  за цялата  крива , които  трябва  да покриват  очакваното  
молекулно  тегло  на пробата . Прекъсващата  точка  с нискомол­  
екулно  тегло  на калибрационната  крива  се определя  от n-хекс­  
илбензола  или друг  подходящ  неполярен  разтворител . Бройните  
и тегловните  средни  молекулни  тегла  обикновено  се определят  с 
помощта  на електронна  обработка  на данните , на базата  на 
формулите  в точка  1.2. В случай  че се използва  ръчна  
цифровизация  на данните , може  да се обърнете  към ASTM D 
3536-91 (3).  
Кривата  на разпределението  трябва  да се направи  под формата  
на таблица  или като диаграма  (диференциална  честота  или сума  
на процентите  спрямо  отчетените  М). При графичното  
представяне  една  декада  от молекулни  тегла  трябва  да има 
около  4 cm широчина  и максималният  пик да има около  8 cm 
височина . При интегрални  криви  на разпределение  разликата  в 
ординатата  между  0 и 100 % трябва  да бъде  около  10 cm.  
2.2. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  следна  
информация : 
2.2.1.  Изпитвано  вещество  
— налична  информация  за изпитваното  вещество  (идентичност , 
добавки , примеси ), ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 128
 
— описания  на обработката  на пробата , наблюдения , проблеми . 
2.2.2.  Оборудване  
— резервоар  за елуент , инертен  газ, дегазиране  на елуента , 
състав  на елуента , примеси , 
— помпа , гасител  на пулсации , инжекторна  система , 
— сепарационни  колони  (производител , пълна  информация  за 
характеристиките  на колоните , като размер  на порите , вид 
на сепарационния  материал , брой , дължина  и ред на 
използваните  колони ), 
— брой  на теоретичните  пластини  на колоната  (или комбин­  
ацията  от колони ), сепарационна  производителност  
(резолюция  на системата ), 
— информация  за симетрията  на пиковете , 
— температура  на колоната , вид на температурния  контрол , 
— детектор  (принцип  на измерване , тип, обем  на кюветката ), 
— разходомер , ако се използва  (производител , принцип  на 
измерване ), 
— система  за записване  и обработка  на данните  (хардуер  и 
софтуер ). 
2.2.3.  Калибровка  на системата  
— подробно  описание  на метода , използван  за построяване  на 
калибрационната  крива , 
— информация  за критериите  за качество  при този метод  
(например  корелационен  коефициент , квадратична  сума  на 
грешките  и т.н.), 
— информация  за всички  екстраполации , допускания  и 
приближения , направени  по време  на експерименталната  
процедура , а също  и за оценката  и обработката  на данните , 
— всички  измервания , използвани  за построяване  на калибрац­  
ионната  крива , трябва  да са документирани  в таблица , която  
включва  следната  информация  за всяка  калибрационна  
точка : 
— име на пробата , 
— производител  на пробата , 
— характерни  стойности  на стандартите  М р , M  n , M  w и 
M w /M n , дадени  от производителя  или получени  при 
последващи  измервания , заедно  с подробностите  за 
метода  на определяне , 
— инжекторен  обем  или инжекторна  концентрация , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 129
 
— стойност  на М р , използвана  за калибровка , 
— елуиращ  обем  или коригирано  време  на задържане , 
измерено  в максималния  пик, 
— М р , изчислено  при максималния  пик, 
— процентна  грешка  на изчисленото  М р и калибрационната  
стойност . 
2.2.4.  Оценка  
— оценка  на база време : методи , използвани  за обезпечаване  на 
необходимата  възпроизводимост  (метод  на корекция , 
вътрешен  стандарт  и т.н.), 
— информация  дали  оценката  е била  извършена  на базата  на 
елуиращия  обем  или на базата  на времето  на задържане , 
— информация  за лимитите  на оценката , ако пикът  не е 
напълно  анализиран , 
— описание  на методите  за изглаждане , ако са използвани  
такива , 
— подготовка  и предварителни  процедури  преди  обработката  
на пробата , 
— наличие  на неразтворени  частици , ако има, 
— инжекторен  обем  (μ1) и инжекторна  концентрация  (mg/ml),  
— наблюдения , посочващи  ефекти , които  водят  до отклонения  
от идеалния  GPC профил , 
— подробно  описание  на всички  модификации  в изпитват­  
елните  процедури , 
— подробности  за диапазоните  на грешките , 
— всякаква  друга  информация  и наблюдения , подходящи  за 
интерпретация  на резултатите . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) DIN 55672, 1995. Gelpermeationschromatographie (GPC) mit 
Tetrahydrofuran (THF) als Elutionsmittel, Teil 1.  
(2) Yau, W. W., Kirkland, J. J., and Bly, D. D. eds, 1979. Modern 
Size Exclusion Liquid Chromatography, J. Wiley and Sons.  
(3) ASTM D 3536-91, 1991. Standard Test Method for Molecular 
Weight Averages and Molecular Weight Distribution by Liquid Exclusion Chromatography (Gel Permeation Chromatography – 
GPC). American Society for Testing and Materials, Phila ­
delphia, Pennsylvania.
 
(4) ASTM D 5296-92, 1992. Standard Test Method for Molecular 
Weight Averages and Molecular Weight Distribution of Polys ­
tyrene by High Performance Size-Exclusion Chromatography. 
American Society for Testing and Materials, Philadelphia, Pennsylvania.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 130
 
Допълнение  
Примери  за други  методи  за определяне  на средното  бройно  молекулно  
тегло  (М n ) за полимери  
Хроматографският  метод  с гел инфилтрация  (GPC) е предпочитаният  метод  
за определяне  на М n , особено  когато  има набор  от стандарти , чиято  
структура  е сравнима  с полимерната  структура . Независимо  от това, било  
поради  практически  трудности  при използването  на GPC, или поради  
очакването , че веществото  няма  да отговори  на задължителните  критерии  
за М n (което  води  до потвърждаване ), се срещат  алтернативни  методи , като 
например : 
1. Употреба  на колигативни  свойства  
1.1. Ебулиоскопия /криоскопия : 
включва  измерване  на повишаването  на точката  на кипене  (ебул­  
иоскопия ) или понижаването  на точката  на замръзване  (крио­  
скопия ) на разтворител  при прибавяне  на полимер . Този  метод  
се базира  на факта , че ефектът  от разтворения  полимер  върху  
точката  на кипене /замръзване  на течността  зависи  от молек­  
улното  тегло  на полимера  (1) (2).  
Приложимост : М n < 20 000.  
1.2. Понижаване  на парното  налягане : 
включва  измерване  на парното  налягане  на избрана  еталонна  
течност  преди  и след  прибавянето  на определени  количества  
полимер  (1) (2).  
Приложимост : М n < 20 000 ( теоретично ; на практика  обаче  е 
лимитирана  стойност ). 
1.3. Мембранна  осмометрия : 
основава  се на принципа  на осмозата , т.е. естествената  
тенденция  на молекулите  на разтворителя  да преминават  през 
полупропускливата  мембрана  от разреден  към концентриран  
разтвор , за да се получи  равновесие . При изпитването  
разреденият  разтвор  е с нулева  концентрация , докато  конце­  
нтрираният  разтвор  съдържа  полимера . Ефектът  на преминаване  
на разтворителя  през мембраната  причинява  разлика  в 
налягането , която  зависи  от концентрацията  и молекулното  
тегло  на полимера  (1) (3) (4).  
Приложимост : M  n между  20 000 и 200 000.  
1.4. Осмометрия  в нарова  фаза : 
включва  сравнение  на скоростта  на изпаряване  на чист  
аерозолен  разтворител  спрямо  поне  три аерозола , съдържащи  
полимера  в различни  концентрации  (1) (5) (6).  
Приложимост : М n < 20 000.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 131
 
2. Анализ  на групата , прекъсваща  нарастването  на веригата  
За да се използва  този метод , са необходими  както  познания  за 
общата  структура  на полимерите , така и за естеството  на 
групите , прекъсващи  нарастването  на веригата  (която  трябва  
да се разграничава  от основния  скелет  например  по NMR или 
титруване /дериватизация ). Определянето  на молекулната  конце­  
нтрация  на прекъсващите  групи , присъстващи  в полимера , може  
да доведе  до стойност  за молекулното  тегло  (7) (8) (9).  
Приложимост : М n до 50 000 ( с намаляваща  надеждност ). 
3. Препратки  
(1) Billmeyer, F. W. Jr., 1984. Textbook of Polymer Science, 3  rd 
Ed., John Wiley, New York.  
(2) Glover, C. A., 1975. Absolute Colligative Property Methods. 
Chapter 4. In: Polymer Molecular Weights, Part I, P. E. 
Slade, Jr. ed., Marcel Dekker, New York.  
(3) ASTM D 3750-79, 1979. Standard Practice for Determination of 
Number-Average Molecular Weight of Polymers by Membrane 
Osmometry. American Society for Testing and Materials, Phila ­
delphia, Pennsylvania.  
(4) Coll, H., 1989. Membrane Osmometry. In: Determination of 
Molecular Weight, A. R. Cooper ed., J. Wiley and Sons, pp. 
25 to 52.  
(5) ASTM 3592-77, 1977. Standard Recommended Practice for 
Determination of Molecular Weight by Vapour Pressure, 
American Society for Testing and Materials, Philadelphia, 
Pennsylvania.  
(6) Morris, C. E. M., 1989. Vapour Pressure Osmometry. In: Deter ­
mination of Molecular Weight, A. R. Cooper ed., John Wiley 
and Sons.  
(7) Schrîder, E., Müller, G., and Arndt, K-F., 1989. Polymer 
Characterisation, Carl Hanser Verlag, Munich.  
(8) Garmon, R. G., 1975. End-Group Determinations, Chapter 3. In: 
Polymer Molecular Weights, Part I, P. E. Slade, Jr. ed. Marcel 
Dekker, New York.  
(9) Amiya, S., et al., 1990. Pure and Applied Chemistry, 62, 2139- 
2146.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 132
 
A.19.  НИСКОМОЛЕКУЛНО  ТЕГЛОВНО  СЪДЪРЖАНИЕ  НА 
ПОЛИМЕРИ  
1. МЕТОД  
Този  хроматографски  метод  с гел инфилтрация  е точно  копие  на 
метода  ОИСР  TG 119 (1996 г.). Основните  принципи  и по- 
подробна  техническа  информация  са дадени  в препратките . 
1.1. УВОД  
Тъй като свойствата  на полимерите  са много  разнообразни , не е 
възможно  да се опише  един -единствен  метод , установяващ  
точно  условията  за сепарация  и оценка , който  да обхваща  
възможностите  и спецификата , които  се получават  при 
сепарацията  на полимерите . По-специално  сложните  
полимерни  системи  често  не се поддават  на хроматография  с 
гел инфилтрация  (GPC). Когато  GPC е неприложима , молек­  
улното  тегло  се определя  с помощта  на други  методи  (вж. 
допълнението ). В такива  случаи  пълните  подробности  и 
оценката  се правят  на базата  на използвания  метод . 
Описаният  метод  се базира  на DIN стандарта  55672 (1). В този 
DIN стандарт  може  да се намери  подробна  информация  как да 
се извършат  изпитванията  и как да се оценят  данните . В случай  
че са необходими  модификации  на условията  на изпитване , тези 
промени  трябва  да бъдат  оправдани . Могат  да се използват  и 
други  стандарти , ако са напълно  подходящи . Описаният  метод  
използва  проби  от полистирол  с позната  полидисперсност  за 
калибровка  и може  да се наложи  да бъде  променен , с цел да 
бъде  подходящ  за определени  полимери , например  водоразт­  
ворими  полимери  и полимери  с дълги  разклонени  вериги . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Нискомолекулното  тегло  условно  се определя  като молекулно  
тегло  под 1 000 далтона . 
Средното  бройно  молекулно  тегло  М n и средното  тегловно  
молекулно  тегло  M  w ce определят  с помощта  на следните  
уравнения : 
M n ¼ Σ n 
i ¼ 1 H i 
Σ n 
i ¼ 1 H i=M i M w ¼ Σ n 
i ¼ 1 H i Ü M i 
Σ n 
i ¼ 1 H i 
където : 
H i = нивото  на детекторния  сигнал  от базовата  линия  на обема  
на задържане  V i , 
M i = молекулното  тегло  на полимерната  фракция  при обема  на 
задържане  V i , и n броя  на точките  с данни . 
Широчината  на разпределение  на молекулното  тегло , която  е 
мярка  за дисперсността  на системата , се изразява  чрез съотнош­  
ението  M w /M n . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 133
 
1.3. ЕТАЛОННИ  ВЕЩЕСТВА  
Тъй като GPC е относителен  метод , трябва  да се извърши  
калибровка . За целта  обикновено  се използват  полистиролови  
стандарти  с линеен  строеж  и тясно  разпределение , с познати  
средни  молекулни  тегла  М n и M  w и познато  молекулно  
тегловно  разпределение . Калибрационната  крива  може  да се 
използва  само  при определяне  на молекулното  тегло  на 
непозната  проба , ако условията  за разделяне  на пробата  и 
стандартите  са били  подбрани  по идентичен  способ . 
Една  установена  връзка  между  молекулното  тегло  и елуиращия  
обем  е валидна  само  при специфичните  условия  на даденото  
изпитване . Условията  включват  преди  всичко  температурата , 
разтворителя  (или сместа  от разтворители ), хроматографските  
условия  и сепарационната  колона  или система  от колони . 
Молекулните  тегла  на пробата , определени  по този начин , са 
относителни  стойности  и се описват  като „полистиролови  еквив­  
алентни  молекулни  тегла “. Това  означава , че в зависимост  от 
структурните  и химическите  различия  между  пробата  и 
стандартите , молекулните  тегла  могат  да се отклоняват  от 
абсолютните  стойности  в по-голяма  или по-малка  степен . Ако 
се използват  други  стандарти , например  полиетиленгликол , 
полиетиленов  окис , полиметил  метакрилат , полиакрилна  
киселина , трябва  да се посочи  причината  за това. 
1.4. ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАТЕЛНИЯ  МЕТОД  
Както  разпределението  на молекулното  тегло  на пробата , така и 
нейните  средни  молекулни  тегла  (M  n , M  w ) могат  да се определят  
чрез GPC. GPC е специален  тип течна  хроматография , при която  
пробата  се сепарира  според  хидродинамичните  обеми  на 
отделните  съставни  части  (2). 
Сепарацията  се извършва , като пробата  преминава  през колона , 
която  е пълна  с порест  материал , обикновено  органичен  гел. 
Малките  молекули  могат  да проникват  през порите , докато  
големите  молекули  не могат . Следователно  пътят  на по- 
големите  молекули  е по-къс и те елуират  първи . Молекулите  
със среден  размер  проникват  през някои  от порите  и елуират  
по-късно . Най-малките  молекули , със среден  хидродинамичен  
радиус , по-малък  от този на порите  на гела, могат  да 
проникват  през всички  пори . Те елуират  последни . 
В идеалния  случай  сепарацията  се контролира  изцяло  от размера  
на молекулните  видове , но на практика  е трудно  да се избегнат  
поне  някои  от абсорбционните  ефекти , които  смущават  процеса . 
Неравномерната  облицовка  на колоната  и мъртвите  обеми  могат  
да влошат  ситуацията  (2). 
Детекцията  се извършва  например  чрез рефрактивен  индекс  или 
UV-абсорбция  и се получава  проста  крива  на разпределението . 
За да се прибавят  обаче  действителните  стойности  на молек­  
улните  тегла  към кривата , е необходимо  да се калибрира  
колоната , като през нея се пуснат  полимери  с известно  
молекулно  тегло  и в идеалния  случай  с доста  широка  подобна  
структура , например  различни  полистиролови  стандарти . 
Резултатът  е типична  крива  на Gaussian, на места  изкривена  от 
малка  опашка  по посока  на страната  с ниско  молекулно  тегло , 
като вертикалната  ос показва  количеството  по тегло  на разл­  
ичните  елуирани  видове  молекулни  тегла , а хоризонталната  ос 
показва  регистрираното  молекулно  тегло . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 134
 
Съдържанието  на нискомолекулно  тегло  се получава  от тази 
крива . Изчислението  може  да бъде  точно  само  ако нискомолек­  
улните  видове  реагират  еквивалентно  на база маса  спрямо  
полимера  като цяло . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Повторяемостта  (относителното  стандартно  отклонение  — 
Relative Standard Deviation (RSD) на елуиращия  обем  трябва  да 
бъде  по-добра  от 0,3 %. Желаната  повторяемост  на анализа  
трябва  да се гарантира  чрез корекция  през вътрешен  стандарт , 
ако хроматограмата  се оценява  в зависимост  от времето  и не 
отговаря  на горепосочените  критерии  (1). Полидисперсностите  
зависят  от молекулните  тегла  на стандартите . В случая  с 
полистироловите  еталони  типичните  стойности  са: 
M p < 2 000 M  w /M n < 1,20 
2 000  < M  p < 10  6 M w /M n < 1,05 
M p > 10  6 M w /M n < 1,20  
(М р е молекулното  тегло  на еталона  при максималния  пик) 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА ИЗПИТВАТЕЛНИЯ  МЕТОД  
1.6.1.  Подготовка  на стандартните  полистиролови  разтвори  
Полистироловите  стандарти  се разтварят  чрез внимателно  
смесване  в избрания  елуент . При подготовката  на разтворите  
трябва  да се вземат  предвид  препоръките  на производителя . 
Концентрациите  на избраните  стандарти  зависят  от различни  
фактори , например  обем  на инжектиране , вискозитет  на 
разтвора  и чувствителност  на аналитичния  детектор . Максим­  
алният  обем  на инжектиране  трябва  да се адаптира  към 
дължината  на колоната , с цел да се избегне  претоварване . 
Типичните  обеми  на инжектиране  за аналитична  сепарация  
чрез GPC с колона  30 cm х 7,8 mm, са обикновено  между  40 
и 100 μl. Възможни  са и по-големи  обеми , но те не трябва  да 
превишават  250 μl. Оптималното  съотношение  между  обема  на 
инжектиране  и концентрацията  трябва  да се определи  преди  
действителната  калибровка  на колоната . 
1.6.2.  Подготовка  на разтвора  проба  
Принципно  при подготовката  на разтворите  проби  се прилагат  
същите  изисквания . Мострата  се разтваря  в подходящ  разт­  
ворител , например  тетрахидрофуран  (THF), чрез старателно  
разклащане . Тя не трябва  при никакви  обстоятелства  да се 
разтваря  с помощта  на ултразвукова  баня . Когато  е необходимо , 
разтворът  проба  се пречиства  през мембранен  филтър  с размер  
на порите  между  0,2 и 2 μm. 
Присъствието  на неразтворени  частици  трябва  да се отчете  във 
финалния  протокол , тъй като тези частици  може  да се дължат  на 
високомолекулни  видове . Трябва  да се използва  подходящ  метод  
за определяне  процента  на теглото  на разтворените  частици . 
Разтворите  трябва  да се използват  в рамките  на 24 часа. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 135
 
1.6.3.  Корекция  на съдържанието  на примеси  и добавки  
Обикновено  не се налага  корекцията  на съдържанието  на видове  
с M < 1 000 поради  приноса  от присъстващите  неполимерни  
специфични  компоненти  (например  примеси  и/или добавки ), 
освен  ако измереното  съдържание  вече е < 1 %. Това  се 
постига  чрез пряк  анализ  за полимерния  разтвор  или GPC елуат . 
В случаите , когато  елуатът , след  преминаване  през колоната , е 
твърде  разреден  за по-нататъшен  анализ , той трябва  да се конце­  
нтрира . За целта  може  би ще е необходимо  да се изпари  елуатът  
до изсушаване  и да се разтвори  отново . Концентрацията  на 
елуата  трябва  да се извърши  при условия , които  да не 
допускат  никакви  промени  в елуата . Обработката  на елуата  
след  GPC зависи  от използвания  аналитичен  метод  за колич­  
ествено  определяне . 
1.6.4.  Апаратура  
GPC-апаратурата  се състои  от следните  компоненти : 
— резервоар  за разтворител , 
— дегазатор  (ако е необходимо ), 
— помпа , 
— гасител  на пулсации  (ако е необходимо ), 
— инжекторна  система , 
— хроматографски  колони , 
— детектор , 
— разходомер  за дебит  (ако е необходимо ), 
— процесор -рекордер  за данни , 
— съд за отпадъци . 
Трябва  да се гарантира , че GPC системата  е инертна  по 
отношение  на използваните  разтворители  (например , чрез 
използване  на стоманени  капиляри  за THF-разтворителя ). 
1.6.5.  Система  за инжектиране  и подаване  на разтворител  
Към колоната  се подава  определен  обем  разтвор  на пробата  или 
автоматично , или ръчно  в строго  определена  зона. Твърде  
бързото  издърпване  или натискане  на буталото  на помпата , 
ако се прави  ръчно , може  да причини  промени  в наблюдаваното  
разпределение  на молекулното  тегло . Системата  за подаване  на 
разтворител  трябва , доколкото  е възможно , да няма  пулсации , 
включвайки  гасител  на пулсации  в идеалния  случай . Дебитът  е 
от порядъка  на 1 ml/min.  
1.6.6.  Колона  
В зависимост  от пробата  полимерът  може  да се охарактеризира  
или с помощта  на проста  колона , или чрез няколко  колони , 
свързани  последователно . На пазара  се предлагат  порести  
материали  за колони  с определени  свойства  (например  размер  
на порите , лимити  на изключване ). Изборът  на сепарационен  гел 
или на дължина  на колоната  зависи  както  от свойствата  на 
пробата  (хидродинамични  обеми , разпределение  на молекулното  
тегло ), така и от специфичните  условия  за сепарация , като разт­  
ворител , температура  и дебит  (1) (2) (3).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 136
 
1.6.7.  Теоретични  пластини  
Колоната  или комбинацията  от колони , използвана (и) за 
сепарация , трябва  да се охарактеризира (т) чрез броя  на теорет­  
ичните  пластини . Това  включва , в случая  на THF като елуиращ  
разтворител , подаване  на разтвор  на етилбензол  или друг  
подходящ  неполярен  разтвор  към колона  с известна  дължина . 
Броят  на теоретичните  пластини  се определя  чрез следното  
уравнение : 
N ¼ 5; 54 Í 
V e 
W 1=2 Î 2 
или N ¼ 16 V e 
W Í Î  2 
където : 
N = броя  на теоретичните  пластини  
V e = елуиращия  обем  при максималния  пик 
W = пика  на широчината  на базовата  линия  
W 1/2 = е пиковата  широчина  при половин  височина  
1.6.8.  Сепарационна  производителност  
Освен  броя  на теоретичните  пластини , който  е количество , 
определящо  широчината  на зоната , известна  роля  играе  и 
сепарационната  производителност , която  се определя  от стръм­  
ността  на калибрационната  крива . Сепарационната  производит­  
елност  на една  колона  се получава  от следната  зависимост : 
V eyM  x Ä V eyð10M  x Þ 
площма  на напречномо  сечение  на колоната  ≥ 6; 0 cm 2 
cm 3 " #  
V eyMx = елуиращия  обем  за полистирол  с молекулно  
тегло  М х 
V еу(10Мх) = елуиращия  обем  за полистирол  с 10 пъти  по-голямо  
молекулно  тегло . 
Резолюцията  на системата  обикновено  се определя , както  
следва : 
R 1;2 ¼ 2 Ü V e1 Ä V e2 
W 1 þ W 2 Ü 1 
log 10 ðM 2=M 1 Þ 
където , 
Ve1, V  e2 = елуиращите  обеми  на двата  полистиролови  
стандарта  в максималния  пик 
W 1 , W  2 = пиковите  широчини  в базовата  линия  
M 1 , M  2 = молекулните  тегла  в максималния  пик (трябва  да се 
различават  с коефициент  10).  
R-стойността  на системата  колони  трябва  да бъде  по-голяма  от 
1,7 (4).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 137
 
1.6.9.  Разтворители  
Всички  разтворители  трябва  да бъдат  с висока  чистота  (за THF 
ce използва  чистота  99,5 %). Резервоарът  за разтворител  (ако е 
необходимо  в атмосфера  от инертен  газ) трябва  да е достатъчно  
голям  за калибровката  на колоната  и няколко  анализа  на проби . 
Разтворителят  трябва  да се дегазира , преди  да бъде  транс­  
портиран  през помпата . 
1.6.10.  Температурен  контрол  
Температурата  на критичните  вътрешни  компоненти  
(инжекторна  верига , колони , детектор  и тръбна  инсталация ) 
трябва  да бъде  постоянна  и съвместима  с избора  на разтворител . 
1.6.11.  Детектор  
Предназначението  на детектора  е да отчита  количествено  конце­  
нтрацията  на пробата , елуирала  от колоната . С цел да се избегне  
ненужното  разширяване  на пиковете , обемът  на кюветката  на 
детекторната  клетка  трябва  да се поддържа  възможно  най- 
малък . Той не трябва  да бъде  по-голям  от 10 μl, освен  при 
разсейване  и детектори  за вискозитет . За детекция  обикновено  
се използва  диференциална  рефрактометрия . Въпреки  това, ако 
специфичните  свойства  на пробата  или на елуиращия  разтвор  го 
изискват , може  да се използват  други  видове  детектори , 
например  UV/VIS, IR, детектори  за вискозитет  и т.н. 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. ДАННИ  
Подробните  оценъчни  критерии , както  и изискванията  относно  
събирането  и обработката  на данни , са посочени  в DIN стандарт  (1). 
За всяка  проба  трябва  да се извършат  два независими  опита . Те 
се анализират  индивидуално . При всички  случаи  е важно  да се 
определят  също  данните  от контролните  опити , обработени  при 
същите  условия  както  пробата . 
Необходимо  е изрично  да се посочи , че измерените  стойности  са 
относителни  стойности , еквивалентни  на молекулните  тегла  на 
използвания  стандарт . 
След  определяне  на обемите  на задържане  или времената  на 
задържане  (които  може  да са коригирани  чрез вътрешен  
стандарт ), регистрираните  М р стойности  (М р като максимален  
пик на калибрационния  стандарт ) се изчертават  спрямо  едно  
от тези количества . Необходими  са поне  две калибрационни  
точки  за една  декада  молекулни  тегла  и поне  пет измервателни  
точки  за цялата  крива , които  трябва  да покриват  очакваното  
молекулно  тегло  на пробата . Прекъсващата  точка  с нискомол­  
екулно  тегло  на калибрационната  крива  се определя  от n-хекс­  
илбензола  или друг  подходящ  неполярен  разтворител . Частта  от 
кривата , съответстваща  на молекулни  тегла  под 1 000, се 
определя  и коригира , както  е необходимо  за примеси  и 
добавки . Елуиращите  криви  обикновено  се оценяват  чрез 
електронна  обработка  на данните . В случай  че се използва  
ръчна  цифровизация  на данните , може  да направите  справка  в 
ASTM D 3536-91 (3).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 138
 
Ако в колоната  се задържи  някакъв  неразтворим  полимер , 
неговото  молекулно  тегло  вероятно  ще бъде  по-високо  от това 
на разтворимата  фракция  и ако не се отчете , ще резултира  в 
надценяване  на съдържанието  на нискомолекулно  тегло . В 
допълнението  е дадено  ръководство  за съдържание  на нискомол­  
екулно  тегло  за неразтворим  полимер . 
Кривата  на разпределението  трябва  да се направи  под формата  
на таблица  или като диаграма  (диференциална  честота  или сума  
на процентите  спрямо  отчетените  М). При графичното  
представяне  една  декада  от молекулни  тегла  трябва  да има 
около  4 cm широчина  и максималният  пик да има около  8 cm 
височина . При интегралните  криви  на разпределение  разликата  в 
ординатата  между  0 и 100 % трябва  да бъде  около  10 cm.  
2.2. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  следна  
информация : 
2.2.1.  Изпитвано  вещество  
— налична  информация  за изпитваното  вещество  (идентичност , 
добавки , примеси ), 
— описания  на обработката  на пробата , наблюдения , проблеми . 
2.2.2.  Оборудване  
— резервоар  за елуент , инертен  газ, дегазиране  на елуента , 
състав  на елуента , примеси , 
— помпа , гасител  на пулсации , инжекторна  система , 
— сепарационни  колони  (производител , пълна  информация  за 
характеристиките  на колоните , като размер  на порите , вид 
на сепарационния  материал , брой , дължина  и ред на 
използваните  колони ), 
— брой  на теоретичните  пластини  на колоната  (или комбин­  
ацията  от колони ), сепарационна  производителност  
(резолюция  на системата ), 
— информация  за симетрията  на пиковете , 
— температура  на колоната , вид на температурния  контрол , 
— детектор  (принцип  на измерване , тип, обем  на кюветката ), 
— разходомер , ако се използва  (производител , принцип  на 
измерване ), 
— система  за записване  и обработка  на данните  (хардуер  и 
софтуер ). 
2.2.3.  Калибровка  на системата  
— подробно  описание  на метода , използван  за построяване  на 
калибрационната  крива , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 139
 
— информация  за критериите  за качество  при този метод  
(например  корелационен  коефициент , квадратична  сума  на 
грешките  и т.н.), 
— информация  за всички  екстраполации , допускания  и 
приближения , направени  по време  на изпитвателната  
процедура , а също  и за оценката  и обработката  на данните , 
— всички  измервания , използвани  за построяване  на калибрац­  
ионната  крива , трябва  да са документирани  в таблица , която  
включва  следната  информация  за всяка  калибрационна  
точка : 
— име на пробата , 
— производител  на пробата , 
— характерни  стойности  на стандартите  М р , M  n , M  w и 
M w /M n , дадени  от производителя  или получени  при 
последващи  измервания , заедно  с подробностите  за 
метода  на определяне , 
— инжекторен  обем  или инжекторна  концентрация , 
— стойност  на М р , използвана  за калибровка , 
— елуиращ  обем  или коригирано  време  на задържане , 
измерено  в максималния  пик, 
— М р , изчислено  при максималния  пик, 
— процентна  грешка  на изчисленото  М р и калибрационната  
стойност . 
2.2.4.  Информация  за съдържанието  на полимер  с нискомолекулно  
тегло  
— описание  на методите , използвани  в анализа , и начина , по 
който  са проведени  изпитванията , 
— информация  за процента  на съдържанието  на видове  
полимери  с нискомолекулно  тегло  (т/т), отнесен  към 
общата  проба , 
— информация  за примесите , добавките  и други  неполимерни  
видове , в тегловен  процент , отнесен  към общата  проба . 
2.2.5.  Оценка  
— оценка  на база време : всички  методи , използвани  за обезп­  
ечаване  на необходимата  възпроизводимост  (метод  на 
корекция , вътрешен  стандарт  и т.н.), 
— информация  дали  оценката  е била  извършена  на базата  на 
елуиращия  обем , или на базата  на времето  на задържане , 
— информация  за лимитите  на оценката , ако пикът  не е 
напълно  анализиран , 
— описание  на методите  за изглаждане , ако са използвани  
такива , 
— подготовка  и предварителни  процедури  преди  обработката  
на пробата , 
— наличие  на неразтворени  частици , ако има, ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 140
 
— инжекторен  обем  (μl) и инжекторна  концентрация  (mg/ml),  
— наблюдения , посочващи  ефекти , които  водят  до отклонения  
от идеалния  GPC-профил , 
— подробно  описание  на всички  модификации  в изпитват­  
елните  процедури , 
— подробности  за диапазоните  на грешките , 
— всякаква  друга  информация  и наблюдения , подходящи  за 
интерпретация  на резултатите . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) DIN 55672, 1995. Gelpermeationschromatographie (GPC) mit 
Tetrahydrofuran (THF) als Elutionsmittel, Teil 1.  
(2) Yau, W. W., Kirkland, J. J., and Bly, D. D. eds., 1979. Modem 
Size Exclusion Liquid Chromatography, J. Wiley and Sons.  
(3) ASTM D 3536-91, 1991. Standard Test method for Molecular 
Weight Averages and Molecular Weight Distribution by Liquid 
Exclusion Chromatography (Gel Permeation Chromatography 
— GPC). American Society for Testing and Materials, Phila ­
delphia, Pennsylvania.  
(4) ASTM D 5296-92, 1992. Standard Test method for Molecular 
Weight Averages and Molecular Weight Distribution of Polys ­
tyrene by High Performance Size-Exclusion Chromatography. American Society for Testing and Materials, Philadelphia, 
Pennsylvania.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 141
 
Допълнение  
Ръководство  за коригиране  на нискомолекулното  съдържание  за 
присъствието  на неразтворим  полимер  
Когато  в една  проба  присъства  неразтворим  полимер , това резултира  в 
загуба  на маса  по време  на GPC-анализа . Неразтворимият  полимер  
необратимо  се задържа  върху  колоната  или филтъра  за пробата , докато  
разтворимата  част преминава  през колоната . В случая , когато  може  да се 
изчисли  или измери  нарастването  (dn/dc) на рефрактивния  индекс  на 
полимера , е възможно  да се изчисли  и загубата  на маса  на пробата  в 
колоната . В този случай  се прави  корекция  с помощта  на външна  
калибровка  със стандартни  материали  с познати  концентрация  и dn/dc, за 
да се калибрира  реакцията  на рефрактометъра . В дадения  тук пример  е 
използван  поли (метилметакрилат ) (рММА ) стандарт . 
При външна  калибровка  за анализ  на акрилни  полимери  един  рММА  
стандарт  с позната  концентрация  в тетрахидрофуран  се анализира  чрез 
GPC и получените  данни  се използват  за намиране  на константата  на 
рефрактометъра  съгласно  уравнението : 
K = R/(C × V × dn/dc)  
където : 
K = рефрактометричната  константа  (в μVs/ml)  
R = реакцията  на рММА  стандарта  (в μVs) 
С = концентрацията  на рММА  стандарта  (в mg/ml)  
V = инжекторния  обем  (в ml), и 
dn/dc = нарастването  на рефрактивния  индекс  за рММА  в 
тетрахидрофуран  (в ml/mg).  
Следните  данни  са типични  за един  рММА  стандарт : 
R = 2 937 891  
С = 1,07 mg/ml  
V = 0,1 ml  
dn/dc = 9 х 10  5 ml/mg  
Резултантната  стойност  K, 3,05 х 10 11 , се използва  за изчисляване  на теорет­  
ичната  детекторна  реакция , ако 100 % от инжектирания  полимер  е елуирал  
през детектора . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 142
 
А.20. ПОВЕДЕНИЕ  НА РАЗТВАРЯНЕ /ЕКСТРАКЦИЯ  НА 
ПОЛИМЕРИ  ВЪВ  ВОДА  
1. МЕТОД  
Описаният  метод  е точно  копие  на преработената  версия  на 
ОИСР  TG 120 (1997 г.). По-подробна  техническа  информация  
е дадена  в препратка  (1). 
1.1. УВОД  
За някои  полимери , като емулсионните  полимери  например , 
вероятно  ще бъде  необходима  първоначална  подготвителна  
работа , преди  да се използва  описаният  по-долу  метод . Този  
метод  не е приложим  за течни  полимери  и за полимери , които  
взаимодействат  с вода  при условията  на изпитването . 
Когато  методът  не е практичен  или възможен , поведението  на 
разтваряне /екстракция  може  да се изследва  чрез други  методи . В 
такива  случаи  трябва  да се дадат  пълни  подробности  и причини  
за използвания  метод . 
1.2. ЕТАЛОННИ  ВЕЩЕСТВА  
Няма . 
1.3. ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАТЕЛНИЯ  МЕТОД  
Поведението  на разтваряне /екстракция  на полимерите  във водна  
среда  се определя  с помощта  на метода  на стъкленицата  (вижте  
А.6 Разтворимост  във вода , метод  на стъкленицата ) с модифик­  
ациите , описани  по-долу . 
1.4. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА ИЗПИТВАТЕЛНИЯ  МЕТОД  
1.5.1.  Оборудване  
За метода  се изисква  следното  оборудване : 
— устройство  за надробяване , например  мелница  за произ­  
водство  на частици  с определен  размер , 
— апаратура  за разбъркване  с възможност  за температурен  
контрол , 
— мембранна  филтърна  система , 
— подходящо  аналитично  оборудване , 
— стандартизирани  сита. 
1.5.2.  Подготовка  на пробата  
Представителната  проба  първо  се довежда  до размер  на 
частиците  между  0,125 и 0,25 mm с помощта  на подходящи  
сита. Може  да е необходимо  да се извърши  охлаждане  за усто­  
йчивостта  на пробата  или за процеса  на смилане . Материалите  с 
каучуково  естество  се раздробяват  при температурата  на течния  
азот (1). 
Ако не се получи  фракция  с желания  размер  на частиците , 
трябва  да се предприемат  действия  за намаляване  на размера  
на частиците  доколкото  е възможно  и резултатът  да се отчете . 
В протокола  е необходимо  да се посочи  начинът , по който  
раздробената  проба  е съхранявана  преди  изпитването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 143
 
1.5.3.  Процедура  
Три проби  по 10 g от изпитваното  вещество  се претеглят  във 
всеки  един  от трите  съда , снабдени  със стъклени  запушалки , и 
към всеки  съд се добавят  по 1 000 ml вода . Ако се докаже , че 
количеството  от 10 g е непригодно , се използва  следващото  най- 
голямо  количество  и обемът  вода  се напасва  съответно . 
Съдовете  се запушват  плътно  и след  това се разбъркват  при 
20 o С. За целта  се използва  прибор  за разбъркване  или разкл­  
ащане , който  да работи  при постоянна  температура . След  
период  от 24 часа съдържанието  на всеки  съд се центрофугира  
или филтрира  и концентрацията  на полимера  в бистрата  водна  
фаза  се определя  чрез подходящ  аналитичен  метод . Ако няма  
подходящи  аналитични  методи  за водната  фаза , общата  
разтворимост /екстракция  може  да се изчисли  от сухото  тегло  
на филтърния  остатък  или центрофугираната  утайка . 
Обикновено  е необходимо  да се разграничат  количествено  
примесите  и добавките , от една  страна , и нискомолекулните  
видове , от друга . При гравиметричното  определяне  е важно  
също  да се извърши  контролно  (празно ) изпитване  без 
изпитвано  вещество , за да се отчетат  остатъците , които  се 
появяват  при процедурата  на изпитването . 
Поведението  на разтворимост /екстракция  на полимерите  
във вода  при 37  o С и рН 2 и рН 9 се определя  по същия  
начин , както  описания  по-горе за провеждането  на изпитването  
при 20  o С. Стойностите  за рН могат  да се постигнат  чрез 
добавяне  или на подходящи  буферни  разтвори , или на 
подходящи  киселини  или основи , като солна  киселина , оцетна  
киселина , аналитичен  натриев  или калиев  хидроокис  или NH  3 . 
В зависимост  от използвания  метод  за анализ  трябва  да се 
извършат  едно  или две изпитвания . Когато  са налице  достатъчно  
специфични  методи  за директен  анализ  на водната  фаза  за 
полимерния  компонент , едно  изпитване  като описаното  по- 
горе би било  достатъчно . Ако обаче  не са налице  такива  
методи  и определянето  на поведението  на разтворимост /­ 
екстракция  на полимера  се ограничава  до индиректен  анализ  
чрез определяне  само  на общото  съдържание  на въглерод  
(TOC) на водния  екстракт , трябва  да бъде  проведено  допълн­  
ително  изпитване . Това  допълнително  изпитване  също  трябва  
да бъде  извършено  три пъти , като се използват  10 пъти  по- 
малки  проби  от полимера  и същите  количества  вода , като 
тези, използвани  в първото  изпитване . 
1.5.4.  Анализ  
1.5.4.1.  Изпитване , проведено  с един  обем  проба  
Съществуват  методи  за директен  анализ  на полимерните  
компоненти  във водната  фаза . Алтернативно  може  да се 
използва  и индиректният  анализ  на разтворени /екстрахирани  
полимерни  компоненти  чрез определяне  на общото  съдържание  
на разтворими  части  и коригиране  за неполимерни  специфични  
компоненти  във водната  фаза . 
Възможно  е да се извърши  анализ  на водната  фаза  за общите  
полимерни  видове : 
или чрез достатъчно  чувствителен  метод , например : 
— TOC, използващ  изваряване  на персулфат  или дихромат , за 
да се получи  СО 2 , последван  от изчисление  чрез IR или 
химичен  анализ , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 144
 
— атомна  абсорбционна  спектрометрия  (AAS) или нейния  
индуктивно  куплиран  плазмен  (ICP) емисионен  еквивалент  
за силиций  или полимери , съдържащи  метали , 
— UV-абсорбция  или спектрофлуорометрия  за арилни  
полимери , 
— LC-MS за нискомолекулни  проби , 
или чрез вакуумно  изпарение  до изсушаване  на водния  екстракт  
и спектроскопен  (IR, UV и т.н.) или AAS/ICP анализ  на 
остатъка . 
Ако анализът  на водната  фаза  като такъв  не е приложим , 
водният  екстракт  трябва  да се екстрахира  с органичен  разт­  
ворител , който  не се смесва  с вода , например  хлориран  въгле­  
водород . Разтворителят  се изпарява  и остатъкът  се анализира , 
както  е описано  по-горе, за оповестеното  съдържание  на 
полимера . Всички  компоненти  в този остатък , идентифицирани  
като примеси  или добавки , трябва  да се извадят  за целите  на 
определянето  на степента  на разтворимост /екстракция  на самия  
полимер . 
Когато  присъстват  относително  големи  количества  от такива  
материали , може  би ще е необходимо  да се направи  анализ  на 
остатъка , например  HPLC или GC анализ , за да се разграничат  
примесите  от мономера  и присъстващите  видове , получени  от 
мономера , така че да бъде  определено  истинското  съдържание  
на последния . 
В някои  случаи  може  да е достатъчно  просто  изпаряване  на 
органичния  разтворител  до изсушаване  и претегляне  на сухия  
остатък . 
1.5.4.2.  Изпитване , проведено  с два различни  обема  проба  
Всички  водни  екстракти  се анализират  за TOC.  
Извършва  се гравиметрично  определяне  на неразтворената /­ 
неекстрахиралата  част на пробата . Ако след  центрофугирането  
или филтрирането  на съдържанието  на всеки  съд полимерните  
остатъци  останат  залепнали  към стената  на съда , съдът  трябва  да 
се изплаква  с филтрата , докато  се изчисти  от всички  видими  
остатъци . След  това филтратът  отново  се центрофугира  или 
филтрира . Остатъците , останали  върху  филтъра  или в центроф­  
угиращата  тръба , се изсушават  при 40 o С във вакуум  и се прет­  
еглят . Сушенето  продължава , докато  се достигне  постоянно  
тегло . 
2. ДАННИ  
2.1. ИЗПИТВАНЕ , ПРОВЕДЕНО  С ЕДИН  ОБЕМ  ПРОБА  
Индивидуалните  резултати  за всяка  от трите  колби  и средните  
стойности  се посочват  и изразяват  в единици  за маса /обем  на 
разтвора  (обикновено  mg/1) или за маса  на полимера  (обик­  
новено  mg/g). Освен  това се посочва  загубата  на тегло  на 
пробата  (изчислена  като тегло  на разтвора , разделено  на 
началното  тегло  на пробата ). Трябва  да се изчислят  и относит­  
елните  стандартни  отклонения  (RSD). Посочват  се 
индивидуалните  цифри  за общото  количество  вещество  
(полимер  + съществени  добавки  и т.н.) и само  за полимера  
(т.е. след  изваждане  на участието  от такива  добавки ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 145
 
2.2. ИЗПИТВАНЕ , ПРОВЕДЕНО  С ДВА  РАЗЛИЧНИ  ОБЕМА  
ПРОБА  
Индивидуалните  TOC-стойности  на водните  екстракти  на две 
тройни  изпитвания  и средната  стойност  за всяко  изпитване  се 
посочват  като единици  за маса /обем  на разтвора  (обикновено  
mgС/l), както  и като единици  за маса /тегло  на първоначалната  
проба  (обикновено  mgС/g). 
Ако няма  разлика  между  резултатите  при най-високото  и най- 
ниското  съотношение  проба /вода , това може  да означава , че 
всички  ектрахируеми  компоненти  наистина  са били  
екстрахирани . В такъв  случай  обикновено  не е необходим  
директен  анализ . 
Индивидуалните  тегла  на остатъците  се посочват  и изразяват  в 
процент  от началните  тегла  на пробите . Средните  стойности  се 
изчисляват  за всяко  изпитване . Разликите  между  100 и проце­  
нтите , които  се получават , представляват  процента  на разт­  
ворения  и екстрахирал  материал  в първоначалната  проба . 
3. ОТЧИТАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  следна  
информация : 
3.1.1.  Изпитвано  вещество  
— налична  информация  за изпитваното  вещество  (идентичност , 
добавки , примеси , съдържание  на нискомолекулни  видове ). 
3.1.2.  Условия  на изпитването  
— описание  на използваните  процедурите  и условията  на 
изпитването , 
— описание  на аналитичните  методи  и методите  за детекция . 
3.1.3.  Резултати  
— резултати  за разтворимост /екстрахируемост  в mg/1; 
индивидуални  усреднени  стойности  за изпитването  на 
екстракция  при различните  разтвори , с разбивка  за 
съдържание  на полимер  и примеси , добавки  и т.н., 
— резултати  за разтворимост /екстрахируемост  в mg/g на 
полимера , 
— TOC- стойности  на водни  екстракти , тегло  на разтвора  и 
изчислените  проценти , ако са измерени , 
— рН на всяка  проба , 
— информация  за контролните  стойности , 
— когато  е необходимо , указания  за химичната  неустойчивост  
на изпитваното  вещество , както  по време  на процеса  на 
изпитване , така и по време  на аналитичния  процес , 
— цялата  информация , която  е важна  за интерпретацията  на 
резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
DIN 53733, 1976. Zerkleinerung von Kunststofferzeugnissen für 
Prüfzwecke.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 146
 
A.21.  ОКСИДИРАЩИ  СВОЙСТВА  (ТЕЧНОСТИ ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  за изпитване  е предназначен  за измерване  на поте­  
нциала  на вещество  в течно  състояние  да повишава  степента  си 
на изгаряне  или на интензивността  на изгаряне  на запалимите  
вещества , или да образува  смес  със запалимо  вещество , която  
може  спонтанно  да се възпламени  при пълно  смесване  на двете  
вещества . Той се основава  на метода  на ООН  за оксидиращи  
течности  (1) и е еквивалентен  на него . Въпреки  това, тъй като 
методът  А.21 е предназначен  преди  всичко  да отговори  на изис­  
кванията  на Регламент  (ЕО) № 1907/2006, се изисква  да се 
направи  сравнение  само  с едно  вещество  за сравнение . Може  
да се наложи  провеждането  на допълнителни  изпитвания  и 
сравнения  с други  вещества  за сравнение , когато  се очаква  
резултатите  от изпитването  да бъдат  използвани  за други  
цели  ( 1 ). 
Този  метод  не може  да бъде  използван , когато  изследването  на 
структурната  формула  установи  по безспорен  начин , че 
веществото  не може  да реагира  екзотермично  със запалим  
материал . 
Полезно  е, преди  провеждане  на изпитването , да има 
предварителна  информация  за евентуалните  експлозивни  
свойства  на веществото . 
Този  метод  не може  да бъде  приложен  за твърди  вещества , 
газове , експлозивни  или силнозапалими  вещества , или 
органични  пероксиди . 
Провеждането  на това изпитване  не е необходимо , когато  вече 
има резултати  за изпитваното  вещество  по метода  на ООН  за 
оксидиращи  течности  (1). 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Средно  време  за повишаване  на налягането  е средноаритмет­  
ичната  стойност  от измерените  времена , за които  изпитваната  
смес  предизвиква  повишаване  на налягането  от 690 kРа до 
2 070 kРа над атмосферното  налягане . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Като  вещество  за сравнение  ( 2 ) се използва  воден  разтвор  65 
тегл. % на азотната  киселина  (х.ч.а). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 147  
( 1 ) Както  например  в рамките  на правилата  на ООН , свързани  с транспорта . 
( 2 ) Киселината  следва  да се титрува  преди  изпитването , за да се установи  нейната  
концентрация .
 В случаите , когато  лицето , провеждащо  изпитването , предп­  
олага , че резултатите  от това изпитване  може  да бъдат  
използвани  за други  цели  ( 1 ), може  също  да се проведе  едно  
изпитване  с други  допълнителни  вещества  за сравнение  ( 2 ). 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Течността , която  ще бъде  изпитвана , се смесва  в тегловно  съот­  
ношение  1:1 с фиброзна  целулоза  и се вкарва  в съд под 
налягане . Ако по време  на смесването  или при въвеждането  ѝ 
в реактора  възникне  спонтанно  запалване , не е необходимо  по- 
нататъшно  изпитване . 
Ако по време  на провеждане  на изпитването  не възникне  
спонтанно  запалване , сместа  се нагрява  в съда  под налягане , 
докато  налягането  не нарасне  от 690 kРа до 2 070 k Ра над 
атмосферното  налягане , и се отчита  средното  време  за 
повишаване  на налягането . То се сравнява  със средното  време  
за повишаване  на налягането  на смес  в съотношение  1:1 на 
веществото (ата) за сравнение  и целулозата . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
В серии  от по пет опита  за едно  вещество  следва  резултатите  да 
не се различават  с повече  от 30 % от средноаритметичната  
стойност . Резултатите , които  се различават  с повече  от 30 % 
от стойността , се пренебрегват , процедурите  по смесване  и 
напълване  се оптимизират  и изпитването  се повтаря . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Подготовка  
1.6.1.1.  Запалими  вещества  
Като  запалим  материал  се използва  изсушена  фиброзна  целулоза  
с нишки  с дължина  между  50 и 250 μm и среден  диаметър  
25 μm (  3 ). Материалът  се суши  до достигане  на постоянно  
тегло  на слоя  с дебелина  не повече  от 25 mm при 105  o С в 
продължение  на 4 часа и се оставя  в сушилня  в присъствие  на 
консервант , докато  изстине  и стане  подходящ  за използване . 
Съдържанието  на вода  в сухия  остатък  целулоза  не следва  да 
надвишава  0,5 % сухо  тегло  ( 4 ). Ако е необходимо , времето  на 
сушене  се удължава  до достигане  на тези параметри  ( 5 ). По 
време  на изпитването  трябва  да се използва  целулоза  от една  
проба . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 148  
( 1 ) Както  например  в рамките  на правилата  на ООН , свързани  с транспорта . 
( 2 ) Напр . в препратка  (1) се използват  50 масови  % перхлорна  киселина  и 40 масови  % 
натриев  хлорат . 
( 3 ) Напр . хроматографска  колона  на Whatman с целулоза  на прах  CF 11, каталожен  
№ 4021 050. 
( 4 ) Потвърдено  (напр .) чрез титруване  по Карл -Фишер . 
( 5 ) По друг  начин  това водно  съдържание  може  да бъде  постигнато  (напр .) чрез 
нагряване  при 105  o С във вакуум  в продължение  на 24 часа.
 1.6.1.2.  Апаратура  
1.6.1.2.1. С ъ д п о д н а л я г а н е 
Изисква  се съд под налягане . Съдът  представлява  цилиндричен  
стоманен  съд под налягане  с дължина  89 mm и външен  
диаметър  60 mm ( вж. фигура  1). Двете  повърхности  са 
свързани  с противоположните  си страни  (намалявайки  
напречното  сечение  на съда  до 50 mm), за да се подобри  
прикрепването , докато  се монтират  пожарният  хидрант  и 
пробката  с вентилационния  отвор . Съдът , който  има отвор  с 
диаметър  20 mm, е вътрешно  вдълбан  във всеки  край  до 
такава  дебелина , че там да бъде  поставена  едноинчова  тръба  
по британския  стандарт  (BSP) или метричния  еквивалент . Прис­  
пособлението  за повишаване  на налягането , под формата  на 
разклонение  (коляно ), е завинтено  към извивката  на съда  под 
налягане  на 35 mm от единия  край  и е на 90  o спрямо  
механично  обработените  повърхности . Вдлъбнатината  за него  е 
с дълбочина  12 mm и е вътрешно  резбована , за да приеме  1/2" 
BSP (или метричния  еквивалент ) външно  резбования  край  на 
разклонението . Ако е необходимо , се използва  инертно  
уплътнение , за да се осигури  неподвижна  газонепропусклива  
свръзка . Разклонението  продължава  55 mm след  тялото  на 
съда  под налягане  и има 6 mm отвор . Краят  на разклонението  
е вжлебен  и е предназначен  да приеме  датчика  за налягане  във 
вид на диафрагма . За измерване  на налягането  може  да бъде  
използван  всякакъв  уред , при условие  че не може  да бъде  
повлиян  от горещи  газове  или разграждащи  се продукти  и 
може  да отговори  на повишаващото  се налягане  в интервала  
690-2 070 k Ра в рамките  на не повече  от 5 ms.  
Най-отдалеченият  от разклонението  край  на съда  под налягане  е 
близо  до пожарния  хидрант , който  е свързан  с два електрода  — 
единия  изолиран  от, а другия  заземен  към тялото  на хидранта . 
Другият  край  на съда  под налягане  е близо  до предпазната  
мембрана  (предпазваща  от налягане  приблизително  2 200 kРа), 
здраво  неподвижно  закрепена  за спирателния  клапан , който  има 
20 mm отвор . Ако е необходимо , се използва  уплътнение  от 
инертен  материал  с пожарния  хидрант , за да се осигури  непроп­  
усклива  за газове  неподвижна  сглобка . Поддържащ  стенд  
(фигура  2) поддържа  апаратурата  на подходящата  височина  
през периода  на използването  ѝ. Обикновено  той се състои  от 
мека  стоманена  плоска  основа  с размери  235 mm × 184 mm × 
6 mm и една  185-милиметрова  дълга  квадратна  куха  част с 
размери  70 mm × 70 mm × 4 mm.  
Частта  е скосена  от всяка  от двете  срещуположни  страни  в 
единия  край  по дължината  на квадратната  куха  част, така че 
да се получи  структура  с две допълнителни  плоски  подпори , 
надхвърлящи  с 86 mm дължината  на цялата  част. Краищата  на 
тези плоски  подпори  са прорязани  под ъгъл  60 o към хоризонтала  
и са заварени  към повърхността  на основата . Прорезът  с размери  
22 mm ширина  х 46 mm дълбочина  се обработва  от едната  
страна  на по-горния  край  на основната  част, така че когато  
монтираният  съд под налягане  е по-надолу , пожарният  
хидрант  да спре  първи  в частта , поддържаща  кутията , а 
коляното  е разположено  в прореза . Стоманен  детайл  с размери  
30 mm ширина  и 6 mm дебелина  е заварен  към по-ниската  
вътрешна  повърхност  на кутията  и действа  като дистанционен  
елемент  (раздалечител ). Два 7-милиметрови  винта  с крилчати  
глави , поставени  на срещуположната  повърхност , задържат  
неподвижен  на място  съда  под налягане . Две стоманени  шини  
с ширина  12 mm и дебелина  6 mm, заварени  към стената  на 
детайлите , допиращи  се към основата  на кутията , поддържат  
отдолу  съда  под налягане . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 149
 
1.6.1.2.2. С и с т е м а з а з а п а л в а н е 
Системата  за запалване  се състои  от 25 cm дълга  Ni/Сr жица  с 
диаметър  0,6 mm и съпротивление  3,85 ohm/m. Жицата  се 
намотава  чрез използване  на пръчка  с диаметър  5 mm под 
формата  на спирала  и се прибавя  към електродите  на 
пожарния  хидрант . Спиралата  следва  да е с някоя  от конф­  
игурациите , показани  на фигура  3. Разстоянието  между  дъното  
на съда  и долната  повърхност  на запалващата  спирала  следва  да 
бъде  20 mm. Ако електродите  не са подвижни , краищата  на 
запалващата  жица  между  серпентината  и дъното  на съда  
следва  да бъдат  изолирани  с керамична  обвивка . Жицата  се 
загрява  чрез постоянен  електроизточник , осигуряващ  поне  10 
А ток. 
1.6.2.  Извършване  на изпитването  ( 1 ) 
Апаратурата , цялостно  сглобена  с датчик  за налягане  и 
нагряваща  система , но без позиционирана  предпазна  мембрана , 
се поддържа  от пожарен  хидрант  в долния  край . 2,5 g от 
изпитваната  течност  се смесват  с 2,5 g изсушена  целулоза  в 
чаша  от химично  стъкло  чрез използване  на стъклена  пръчка  
за разбъркване  ( 2 ). За осигуряване  на безопасност  смесването  
следва  да бъде  извършвано  при наличието  на защитна  
преграда  между  оператора  и сместа . Ако сместа  се запали  по 
време  на смесването  или разбъркването , не е необходимо  
изпитването  да се провежда  докрай . Сместа  се вкарва  на 
малки  порции  в съда  под налягане  и следва  да сте сигурни , че 
тя се натрупва  около  запалващата  спирала  и прави  добър  
контакт  с нея. Важно  е спиралата  да не се изкриви  по време  
на процеса  на натрупване , тъй като това може  да доведе  до 
погрешни  резултати  ( 3 ). Предпазната  мембрана  е поставена  в 
готовност  и спирателният  клапан  е завинтен  плътно . Напъ­  
лненият  съд се премества  до поддържащия  пожарен  стенд , 
предпазната  мембрана  следва  да бъде  поставена  най-отгоре  в 
подходящ  армиран  смукателен  (вентилационен ) шкаф  или в 
камерата  за изгаряне . Електроенергия  се доставя  чрез 
свързване  на пожарния  хидрант  с външен  източник  и се пуска  
ток със сила  10 А. Времето  между  започването  на смесването  и 
включването  към енергоизточник  не следва  да надвишава  10 
минути . 
Сигналът , получаван  чрез датчика  за налягане , се записва  от 
подходяща  за целта  система , която  позволява  едновременно  
оценяването  и генерирането  на траен  запис  на получения  
времеви  контур  на налягането  (напр . свързани  самопишещо  и 
графично  устройство ). Сместа  се нагрява , докато  предпазната  
мембрана  се пробие  или докато  изминат  поне  60 секунди . Ако 
предпазната  мембрана  не се разкъса , сместа  трябва  да бъде  
оставена  да се охлади , преди  апаратурата  внимателно  да бъде  
демонтирана , като се вземат  предпазни  мерки  срещу  евентуално  
поставяне  под налягане . Извършват  се пет опита  с изпитваното  
вещество  и веществото (ата) за сравнение . Отчита  се времето  за 
повишаване  на налягането  от 690 kРа до 2 070 k Ра над 
атмосферното  налягане . Изчислява  се средното  време  за 
повишаване  на налягането . 
В някои  случаи  веществата  могат  да генерират  повишено  
налягане  (твърде  високо  или твърде  ниско ), получено  в 
резултат  на химични  реакции , които  не определят  окислит­  
елните  свойства  на веществото . В тези случаи  може  да се 
наложи  изпитването  да се повтори  с инертно  вещество , напр . 
диатомит  (кизелгур ), вместо  целулоза , за да се изясни  
същността  на реакцията . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 150  
( 1 ) Смесите  на окислители  с целулоза  трябва  да бъдат  третирани  като потенциално  
експлозивни  и с тях да се работи  с повишено  внимание . 
( 2 ) На практика  това може  да се постигне  чрез приготвяне  на смес  в съотношение  1:1 
от течността  за изпитване  и целулоза  в по-големи  количества  от нужното  за опита  
и прибавяне  на 5 + 0,1 g в съда  под налягане . Сместа  трябва  да се приготвя  
непосредствено  при всеки  отделен  опит . 
( 3 ) По-специално  трябва  да се избягва  контакт  между  съседните  намотки  на спиралата .
 2. ДАННИ  
Времето  за повишаване  на налягането  за изпитваното  вещество  
и веществото (ата) за сравнение . Времето  за повишаване  на 
налягането  при изпитвания  с инертно  вещество , ако се 
провеждат  такива . 
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Изчисляват  се средните  времена  за повишаване  на налягането  за 
изпитваното  вещество  и за веществото (ата) за сравнение . 
Изчислява  се средното  време  за повишаване  на налягането  от 
изпитванията  с инертно  вещество  (ако са провеждани  такива ). 
Примери  за някои  резултати  са представени  в таблица  1. 
Таблица  1 
Примерни  резултати  ( г ) 
Вещество  ( в ) Средно  време  за повишаване  на налягането  за смес  
1:1 с целулоза  
(ms) 
Амониев  бихромат , наситен  воден  разтвор  20 800 
Калциев  нитрат , наситен  воден  разтвор  6 700 
Железен  нитрат , наситен  воден  разтвор  4 133 
Литиев  перхлорат , наситен  воден  разтвор  1 686 
Магнезиев  перхлорат , наситен  воден  разтвор  777 
Никелов  нитрат , наситен  воден  разтвор  6 250 
Азотна  киселина , 65 % 4 767 (  а ) 
Перхлорна  киселина , 50 % 121 (  а ) 
Перхлорна  киселина , 55 % 59 
Калиев  нитрат , 30 % воден  разтвор  26 690 
Сребърен  нитрат , наситен  воден  разтвор  (  б ) 
Натриев  хлорат , 40 % воден  разтвор  2 555 (  а ) 
Натриев  нитрат , 45 % воден  разтвор  4 133  
Инертно  вещество  
Вода :целулоза  (  б ) 
( а ) Средна  стойност  от сравнителни  опити  на различни  лаборатории . 
( б ) Не се достига  максималното  налягане  от 2070 kРа. 
( в ) Наситените  разтвори  се приготвят  при 20  o С. 
( г ) Вж. препратка  (1) за класификация  по схемата  на ООН  за транспорт . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 151
 
3. ОТЧИТАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  следва  да съдържа  следната  
информация : 
— идентичност , състав , чистота  и т.н. на изпитваното  вещество ; 
— концентрация  на изпитваното  вещество ; 
— процедура  за сушене  на използваната  целулоза ; 
— съдържание  на вода  в използваната  целулоза ; 
— резултати  от измерванията ; 
— резултати  от изпитванията  с инертно  вещество , ако има 
такива ; 
— изчислени  средни  стойности  на времето  за повишаване  на 
налягането ; 
— всички  отклонения  от този метод  и причините  за тях; 
— цялата  допълнителна  информация  или бележки , свързани  с 
интерпретирането  на резултатите . 
3.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  ( 1 ) 
Резултатите  от изпитването  се оценяват  въз основа  на: 
а) наличието  на спонтанно  запалване  на сместа  от изпитваното  
вещество  и целулозата ; и 
б) сравнението  между  средното  време , за което  налягането  се е 
повишило  от 690 kРа до 2 070 k Ра, и това при вещест­  
вото (ата) за сравнение . 
Течно  вещество  се счита  за окислител , когато : 
а) смес  в съотношение  1:1 от масата  на веществото  и на 
целулозата  се самозапали  спонтанно ; или 
б) смес  в съотношение  1:1 от масата  на веществото  и на 
целулозата  покаже  средно  време  за повишаване  на 
налягането , по-малко  или равно  на средното  време  за 
повишаване  на налягането  на смес  в съотношение  1:1 от 
масата  на 65 тегл. % воден  разтвор  на азотна  киселина  и 
целулоза . 
За да се избегнат  неверни  положителни  резултати , ако е необ­  
ходимо , резултатите , получени  при изпитването  на веществото  с 
инертен  материал , също  могат  да се вземат  под внимание  при 
интерпретирането  на резултатите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 152  
( 1 ) Вж. препратка  1 за интерпретиране  на резултатите  съгласно  правилата  на ООН , 
свързани  с транспорта , с използването  на няколко  вещества  за сравнение .
 4. ПРЕПРАТКИ  
Препоръки  при транспорт  на опасни  стоки , ръководство  за 
изпитвания  и критерии . Трето  преработено  издание . Публ­  
икация  на ООН  №: ST/SG/AC.10/11/Rev. 3, 1999 г., 
стр. 342. Метод  О.2: Изпитване  на оксидиращи  течности . 
Фигура  1 
Съд под налягане
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 153
 
Фигура  2 
Поддържащ  стенд
  
Фигура  3 
Система  на запалване
  
Забележка : може  да бъде  използвана  всяка  от тези конфигурации . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 154
 
A.22.  ПРЕТЕГЛЕНА  СПРЯМО  ДЪЛЖИНАТА  СРЕДНОГЕОМЕ­  
ТРИЧНА  СТОЙНОСТ  НА ДИАМЕТЪРА  НА ВЛАКНА  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Настоящият  метод  описва  процедура  за измерване  на прет­  
еглената  спрямо  дължината  средногеометрична  стойност  на 
диаметъра  (LWGMD) на насипни  изкуствени  минерални  влакна  
(MMMF). Тъй като LWGMD на всички  влакна  попада  с 95 % 
вероятност  в 95-процентния  доверителен  интервал  (LWGMD ± 
две стандартни  грешки ) на пробата , определената  стойност  
(стойност  от изпитването ) ще бъде  долната  95-процентна  
доверителна  граница  на пробата  (т.е. LWGMD — 2 стандартни  
грешки ). Методът  е въз основа  на актуализация  (юни 1994 г.) на 
проект  на HSE за процедура  за отрасъла , съгласуван  на среща  
между  Европейската  асоциация  на отрасъла  на керамичните  
влакна  (ECFIA) и HSE в Честър  на 26.9.1993 г. и е разработен  
за и от втори  междулабораторен  опит  (1, 2). Настоящият  метод  
за измерване  може  да се използва  за охарактеризиране  на 
диаметъра  на влакната  на насипни  материали  или продукти , 
които  съдържат  MMMF, включително  и огнеупорни  керамични  
влакна  (RCF), изкуствени  стъкловлакна  (MMVF), кристални  и 
поликристални  влакна . 
Претеглянето  спрямо  дължината  е начин  за компенсация  на 
ефекта  от разпределяне  на диаметъра  при късане  на дълги  
влакна  по време  на вземане  на проби  или работа  с материала . 
Геометричните  статистически  данни  (средногеометрична  
стойност ) се използват  за измерване  на разпределенията  на 
големините  на диаметрите  на MMMF, тъй като тези диаметри  
обикновено  имат  разпределения  на големината , които  са 
приблизително  логнормални  разпределения . 
Измерването  на дължината  и на диаметъра  е както  трудоемък , 
така и изискващ  време  процес , но ако бъдат  измерени  само  
онези  влакна , които  допират  една  безкрайно  тънка  линия  от 
зрителното  поле  на сканиращ  електронен  микроскоп  (СЕМ ), 
тогава  вероятността  да бъде  избрано  определено  влакно  е 
пропорционална  на неговата  дължина . Тъй като то отчита  
дължината  при изчисленията  за претегляне  спрямо  дължината , 
единственото  необходимо  измерване  е на диаметъра , и 
LWGMD–2 СГ може  да се изчисли , както  е описано . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Частица : Обект  със съотношение  на дължината  към ширината , 
по-малко  от 3:1.  
Влакно : Обект  със съотношение  на дължината  към ширината  
(стройност ) най-малко  3:1.  
1.3. ОБХВАТ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
Методът  е предназначен  да разглежда  разпределения  на диам­  
етъра , когато  медианният  диаметър  е от 0,5 μm до 6 μm. По- 
големи  диаметри  могат  да се измерват  с по-малко  увеличение  на 
СЕМ , но в такъв  случай  методът  ще бъде  все по-ограничителен  
за по-тесни  разпределения  на влакната , като при медианни  
диаметри  под 0,5 μm се препоръчва  измерване  с трансмисионен  
електронен  микроскоп  (TEM).  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 155
 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Чрез  ядково  вземане  на проба  се вземат  определен  брой  предста­  
вителни  проби  от плъст  от влакна  или от влакна  в насипно  
състояние . Дължината  на така получените  влакна  се намалява  
чрез раздробяване  и една  представителна  подпроба  се 
разпръсква  във вода . Вземат  се аликвотни  части  от пробата  и 
се прецеждат  през поликарбонатен  филтър  с диаметър  на порите  
0,2 μm и се подготвят  за изследване  със сканиращ  електронен  
микроскоп . Диаметрите  на влакната  се измерват  с увеличение  на 
екрана  × 10 000 или по-голямо  ( 1 ), като се използва  метод  на 
подбор  в обсега  на линия , който  дава безпристрастна  оценка  
на медианния  диаметър . Изчислява  се долният  доверителен  
интервал  от 95 % ( въз основа  на едностранно  изпитване ), за 
да се направи  оценка  за най-нискат a стойност  на средногеом­  
етричния  диаметър  на влакното  на материала . 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.5.1.  Безопасност /предпазни  мерки  
Личното  експониране  на намиращи  се във въздуха  влакна  следва  
да бъде  сведено  до минимум  и при боравене  със сухите  влакна  
следва  да се използва  смукателен  шкаф  или защитна  камера  с 
ръкавици . Следва  да се провежда  периодичен  мониторинг  на 
личното  експониране , за да се определи  ефективността  на 
методите  за контрол . При боравене  с MMMF следва  да се 
използват  ръкавици  за еднократна  употреба , за да се намали  
дразненето  на кожата  и да се избегне  кръстосано  замърсяване . 
1.5.2.  Апаратура /оборудване  
— Преса  и форми  (способни  да постигнат  10 MPa).  
— Поликарбонатни  капилярни  филтри  (25 mm диаметър ) с 
размер  на порите  0,2 μm. 
— Мембранен  филтър  от целулозен  естер  с размер  на порите  
5 μm като подсигуряващ  филтър . 
— Стъклен  прибор  за филтриране  (или филтриращи  системи  за 
еднократна  употреба ), който  да побира  филтри  с диаметър  
25 mm ( напр . стъкления  комплект  за микроанализи  на 
Millipore, тип № XX10 025 00).  
— Прясно  дестилирана  вода , филтрирана  през филтър  с размер  
на порите  0,2 μm, за да се отстранят  микроорганизмите . 
— Апарат  за метализиране  чрез запрашване  със златна  или 
златна /паладиева  мишена . 
— Сканиращ  електронен  микроскоп  с разделителна  способност , 
достигаща  10 nm и работещ  с увеличение  × 10 000.  
— Разни : шпатули , скалпел  тип 24, пинсети , тръби  за СЕМ , 
въглеродно  лепило  или въглеродна  залепваща  лента , 
колоиден  разтвор  на сребро . 
— Ултразвукова  сонда  или настолна  ултразвукова  вана . 
— Прибор  за вземане  на ядкова  проба  или лабораторна  замба  за 
вземането  на ядкови  проби  от плъст  от MMMF.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 156  
( 1 ) Тази  увеличителна  стойност  е указана  за влакна  от 3 μm, за влакна  от 6 μm може  
да е по-подходящо  увеличение  × 5 000.
 1.5.3.  Процедура  на изпитване  
1.5.3.1.  Взимане  на проби  
За плъст  и кече  се използва  25-милиметрова  ядкова  сонда  или 
лабораторна  замба , за да се вземат  проби  от напречното  сечение . 
Те следва  да бъдат  разположени  равномерно  по широчината  при 
малка  дължина  на плъстта  или ако са налични  големи  дължини  
от плъстта , се вземат  проби  от произволно  избрани  зони . 
Същото  оборудване  може  да се използва  за вземане  на 
случайни  проби  от свободна  маса  влакна . По възможност  се 
вземат  шест  проби , които  да отразят  пространствените  
промени  в насипния  материал . 
Шестте  ядкови  проби  се раздробяват  в 50-милиметрова  форма  
при 10 MPa. Материалът  се размесва  с шпатула  и се пресова  
отново  при 10 МРа , след  което  се изважда  от формата  и се 
поставя  в запечатана  стъклена  бутилка . 
1.5.3.2.  Подготовка  на пробата  
Ако е необходимо , свързващото  органично  вещество  може  да се 
отстрани , като влакната  се поставят  за около  един  час в пещ при 
450 °С. 
Оформете  пробата  с конус  и след  това я разделете  на четири  
части  (това следва  да се извърши  в смукателен  шкаф ). 
С помощта  на шпатула  добавете  малко  количество  (< 0,5 g) от 
пробата  в 100 ml прясно  дестилирана  вода , която  е била  
филтрирана  през 0,2 μm мембранен  филтър  (могат  да се 
използват  алтернативни  източници  на свръхчиста  вода , ако е 
доказано , че удовлетворяват  изискванията ). Разбърква  се 
изцяло  с помощта  на ултразвукова  сонда  при мощност  100 W 
и регулирана  така, че да се образува  кавитация . (Ако не разп­  
олагате  със сонда , използвайте  следния  метод  — многократно  
разклатете  и обърнете  обратно  в продължение  на 30 секунди ; в 
настолна  ултразвукова  вана  за 5 минути ; след  това многократно  
разклатете  и обърнете  обратно  за още 30 секунди ). 
Непосредствено  след  разбъркването  на влакната  вземете  няколко  
аликвотни  части  (напр . три аликвотни  части  от 3, 6 и 10 ml) с 
пипета  с широк  отвор  (2—5 ml вместимост ). 
Филтрирайте  вакуумно  всяка  взета  аликвотна  част през 
поликарбонатен  филтър  0,2 μm с допълнителен  подсигуряващ  
филтър  МЕС  с пори  5 μm с помощта  на 25-милиметрова  
стъклена  фуния  за филтриране  с цилиндричен  резервоар . 
Приблизително  5 ml от филтрираната  дестилирана  вода  следва  
да се постави  във фунията , а аликвотната  част бавно  се добавя  
във водата  с помощта  на пипета , чийто  връх  се държи  под 
повърхността  на течността . След  тази процедура  резервоарът  и 
пипетата  трябва  да бъдат  добре  промити , тъй като фините  
влакна  обикновено  се разполагат  в по-голяма  степен  по 
повърхността . 
Внимателно  отстранете  филтъра  и го отделете  от допълнителния  
филтър , преди  да го сложите  в съд за изсушаване . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 157
 
Със скалпел  тип 24 отрежете  с възвратно -постъпателно  
движение  четвърт  сектор  или половината  от филтъра  с 
филтрираните  отложения . Внимателно  прикрепете  отрязаната  
част към предметната  плочка  на СЕМ , като използвате  
залепваща  въглеродна  лепенка  или въглеродно  лепило . За 
подобряване  на електрическия  контакт  по краищата  на 
филтъра  и предметната  плочка  следва  да се нанесе  колоидно  
сребро  най-малко  на три места . Когато  лепилото /колоидното  
сребро  изсъхне , чрез метализиране  чрез запрашване  покрийте  с 
приблизително  50 nm златен  или златен /паладиев  слой  
повърхността  на отложенията . 
1.5.3.3.  Калибриране  и работа  със СЕМ  
1.5.3.3.1. К а л и б р и р а н е 
Калибрирането  на СЕМ  следва  да се проверява  поне  веднъж  
седмично  (най-добре  веднъж  дневно ) чрез използване  на сертиф­  
ицирана  калибрираща  решетка . Калибрирането  се проверява  
спрямо  сертифициран  стандарт  и ако измерената  стойност  
(СЕМ ) не е в рамките  на ± 2 % от сертифицираната  стойност , 
тогава  калибрирането  на СЕМ  трябва  да се регулира  и да се 
провери  отново . 
СЕМ  следва  да може  да измери  най-малко  минимален  видим  
диаметър  от 0,2 μm, като се използва  реална  матрица  образец  
при увеличение  x 2 000.  
1.5.3.3.2. Р а б о т а 
Със СЕМ  следва  да се работи  с увеличение  10 000 (  1 ) при 
условия , които  осигуряват  добра  резолюция  и задоволителен  
образ  при бавна  скорост  на сканиране , например  5 секунди  на 
кадър . Въпреки  че работните  изисквания  на различните  СЕМ  
може  да варират , обикновено  за постигане  на най-добра  
видимост  и резолюция  при материали  със сравнително  ниско  
атомно  тегло  следва  да се използва  ускорително  напрежение  
5—10 keV с малка  големина  на петното  и късо  работно  разст­  
ояние . Тъй като се използва  линейно  трасиране , следва  да се 
използва  наклон  от 0 o , за да се сведе  до минимум  повторното  
фокусиране  или ако СЕМ  е с евцентрично  стъпало , следва  да се 
използва  евцентричното  работно  разстояние . Ако материалът  не 
съдържа  малки  (по диаметър ) влакна  и диаметрите  на влакната  
са големи  (> 5 μm), може  да се използва  по-малко  увеличение . 
1.5.3.4.  Измерване  
1.5.3.4.1. И з с л е д в а н е с н и с к о у в е л и ч е н и е з а о ц е н к а н а 
п р о б а т а 
Първоначално  пробата  се изследва  с ниско  увеличение , за да се 
определи  дали  има сплъстяване  на големи  влакна  и да се оцени  
гъстотата  на влакната . При наличие  на прекомерно  сплъстяване  
се препоръчва  да се приготви  нова  проба . 
За статистическата  точност  е необходимо  да се измери  
минимален  брой  влакна  и високата  им гъстота  може  да 
изглежда  за предпочитане , тъй като изследването  на празни  
полета  отнема  време  и не допринася  за анализа . Обаче  ако 
филтърът  е претоварен , става  трудно  да се измерят  всички  
измерими  влакна  и тъй като малките  влакна  може  да са 
закрити  от по-големи , могат  да бъдат  пропуснати . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 158  
( 1 ) За влакна  от 3 μm вж. предходната  бележка .
 Отклонение  към надценяване  на LWGMD може  да възникне  при 
гъстота  на влакната  над 150 влакна  на 1 милиметър  линейно  
трасиране . От друга  страна , ниските  концентрации  на влакна  
биха  увеличили  времето  за анализ  и често  е по-рентабилно  да 
се изготви  проба  с гъстота  на влакната , близка  до оптималната , 
отколкото  да се продължава  броенето  при филтри  с ниска  
концентрация . Оптималната  гъстота  на влакната  би трябвало  
да даде  средно  около  едно  или две преброими  влакна  за 
зрително  поле  при увеличение  5 000. Независимо  от това 
оптималната  гъстота  ще зависи  от размера  (диаметъра ) на 
влакната , така че е необходимо  операторът  да използва  
известна  експертна  преценка , за да реши  дали  плътността  на 
влакното  е близка  до оптималната  или не. 
1.5.3.4.2. П р е т е г л я н е с п р я м о д ъ л ж и н а т а н а д и а м е т р и т е 
н а в л а к н а т а 
Отчитат  се единствено  онези  влакна , които  допират  (или 
пресичат ) една  (безкрайно ) тънка  линия , очертана  на екрана  на 
СЕМ . Поради  тази причина  се начертава  хоризонтална  (или 
вертикална ) линия  през центъра  на екрана . 
Като  алтернативен  метод  се поставя  точка  в центъра  на екрана  и 
пробата  се сканира  без прекъсване  в една  посока  през филтъра . 
Диаметърът  на всяко  влакно  със стройност , по-голяма  от 3:1, 
което  допира  или пресича  тази точка , се измерва  и записва . 
1.5.3.4.3. И з м е р в а н е н а в л а к н а т а 
Препоръчва  се да се измерят  минимум  300 влакна . Всяко  влакно  
се измерва  само  един  път в точката  на пресичане  с линията  или 
в точката , очертана  върху  образа  (или близо  до точката  на прес­  
ичане , ако ръбовете  на влакното  са неясни ). Ако попаднете  на 
влакна  с различни  напречни  сечения , следва  да се използва  
измерване , представящо  средния  диаметър  на влакното . Трябва  
да се внимава  при определяне  на ръбовете  и измерване  на най- 
късото  разстояние  между  ръбовете  на влакното . Измерването  
може  да се извърши  в момента  или впоследствие  на базата  на 
съхранени  образи  или снимки . Препоръчва  се използването  на 
полуавтоматични  системи  за измерване  на образи , които  
прехвърлят  данните  директно  в електронна  таблица , тъй като 
пестят  време , отстраняват  грешки  при вписването  и изчис­  
ленията  могат  да бъдат  автоматизирани . 
Краищата  на дълги  влакна  следва  да се проверяват  при ниско  
увеличение , за да се гарантира , че те не завиват  обратно  в 
полето  на измерване  и че са измерени  само  веднъж . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Диаметрите  на влакната  обикновено  не са с нормално  
разпределение . Въпреки  това чрез логаритмично  преобразуване  
е възможно  да се получи  разпределение , което  се приближава  до 
нормалното . 
Изчислете  средноаритметичната  стойност  (среден  InD) и 
стандартното  отклонение  (SD  InD ) на логаритъма  с основа  е на 
стойностите  (lnD) на n диаметри  на влакна  (D). 
mean lnD ¼ ∑ lnD 
n (1) ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 159
 
SD lnD ¼ ﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃﬃ  
∑ ðln D – mean lnDÞ 2 
n – 1 s 
(2) 
Стандартното  отклонение  се дели  на квадратния  корен  на броя  
измервания  (n), за да се получи  стандартната  грешка  (SE  lnD ). 
SE lnD ¼ SD 
ﬃﬃﬃ n p (3) 
Извадете  два пъти  стандартната  грешка  от средната  стойност  и 
изчислете  експоненциалната  на тази стойност  (средната  
стойност  минус  две стандартни  грешки ), за да получите  средног­  
еометричната  стойност  минус  две стандартни  геометрични  
грешки . 
LWGMD – 2SE ¼ e ðmean lnD – 2SE  lnd Þ (4) 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  следва  да включва  най-малко  
следната  информация . 
— Стойността  на LWGMD-2SE.  
— Всички  отклонения  и особено  онези , които  биха  могли  да 
повлияят  на прецизността  и точността  на резултатите , с 
подходящи  обосновки . 
4. ИЗПОЛЗВАНА  ЛИТЕРАТУРА  
1. B. Tylee SOP MF 240. Health and Safety Executive. Февруари  
1999 г. 
2. G. Burdett and G. Revell. Development of a standard method to 
measure the length-weigthed geometric mean fibre diameter: Results of the Second inter-laboratory exchange. IR/L/MF/94/ ­
07. Project R42.75 HPD. Health and Safety Executive. 
Research and Laboratory Services Division. 1994 г.
 ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 160
 
A.23.  КОЕФИЦИЕНТ  НА РАЗПРЕДЕЛЕНИЕ  (1-ОКТАНОЛ /ВОДА ): 
МЕТОД  НА БАВНО  РАЗБЪРКВАНЕ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
123 на ОИСР  (ОИСР  TG 123) (2006 г.). Коефициентът  на 
разпределение  1-октанол /вода  (P OW ) със стойности  до log P  OW 8,2 се 
определя  точно  чрез метода  на бавно  разбъркване  (1). Поради  това този 
експериментален  подход  е подходящ  за директно  определяне  на P OW на 
силно  хидрофобни  вещества . 
2. Други  методи  за определяне  на коефициента  на разпределение  1-окта­  
нол/вода  (P  OW ) са методът  „разклащане  в стъкленица “ (2) и 
определянето  на P OW от поведението  на задържане  при HPLC с 
обърната  фаза  (3). При метода  „разклащане  в стъкленица “ са 
възможни  артефакти  поради  преноса  на микрокапчици  октанол  във 
водната  фаза . С повишаването  на стойностите  на P OW наличието  на 
тези капчици  във водната  фаза  води  до растящо  завишаване  на 
оценката  за концентрацията  на изпитваното  вещество  във водата . 
Поради  това, използването  на този метод  се ограничава  само  до 
вещества  с log P  OW < 4. Вторият  метод  разчита  на сигурни  данни  от 
пряко  определени  стойности  на P OW за калибриране  на връзката  между  
поведението  на задържане  при HPLC и измерените  стойности  на P OW . 
Налични  са били  проектоуказания  на ОИСР  за определяне  на коеф­  
ициентите  на разпределение  1-октанол /вода  на вещества , които  могат  
да съществуват  в йонизирано  състояние  (4), но използването  на същите  
се преустановява . 
3. Настоящият  метод  за изпитване  е разработен  в Нидерландия . Точността  
на методите , описани  тук, е била  валидирана  и оптимизирана  с 
изследване  за валидиране  чрез кръгово  изпитване , в което  са взели  
участие  15 лаборатории  (5). 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
Значение  и употреба  
4. За инертни  органични  вещества  е открита  значителна  взаимовръзка  
между  коефициентите  на разпределение  1-октанол /вода  (P  OW ) и 
тяхната  биоакумулация  в рибата . Освен  това е доказано , че P OW е 
свързан  и с токсичността  на рибата , както  и със сорбцията  на 
химикали  в твърди  вещества  като почви  и седименти . В препратка  6 
е представен  подробен  преглед  на взаимовръзките . 
5. Установени  са множество  взаимовръзки  между  коефициента  на 
разпределение  1-октанол /вода  и други  свойства  на вещества  от 
значение  за екологичната  токсикология  и химията . Вследствие  на 
това, коефициентът  на разпределение  1-октанол /вода  се превърна  в 
ключов  параметър  при оценката  на екологичния  риск  от химикали , 
както  и за прогнозиране  на поведението  на химикалите  в околната  
среда . 
Обхват  
6. Смята  се, че опитът  с бавно  разбъркване  намалява  образуването  на 
микрокапчици  от капчици  от 1-октанол  във водната  фаза . Вследствие  
на това не се получава  завишена  оценка  на концентрацията  във вода  
заради  молекулите  на изпитваното  вещество , свързани  с такива  
капчици . Поради  това методът  на бавно  разбъркване  е особено  
подходящ  за определянето  на P OW за вещества  с очаквани  стойности  
на log P  OW 5 и по-високи , за които  методът  „разклащане  в стъкленица “ 
(2) би могъл  да доведе  до погрешни  резултати . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 161
 
ОПРЕДЕЛЕНИЕ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
7. Коефициентът  на разпределение  на едно  вещество  между  вода  и 
липофилен  разтворител  (1-октанол ) характеризира  равновесното  
разпределение  на химикала  между  двете  фази . Коефициентът  на 
разпределение  между  вода  и 1-октанол  (P OW ) се определя  като съот­  
ношението  на равновесните  концентрации  на изпитваното  вещество  в 
1-октанол , наситен  с вода  (C O ) и във вода , наситена  с 1-октанол  (C W ). 
P OW ¼ C O=C W 
Понеже  е съотношение  на концентрации , той е безразмерна  величина . 
Най-често  той се представя  като десетичен  логаритъм  (log P  OW ). P  OW 
зависи  от температурата  и в докладваните  данни  следва  да се включи  
температурата  при измерването . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
8. За да се определи  коефициентът  на разпределение , водата , 1-октанолът  
и изпитваното  вещество  се уравновесяват  едно  с друго  при постоянна  
температура . След  това се определят  концентрациите  на изпитваното  
вещество  в двете  фази . 
9. Експерименталните  трудности , свързани  с образуването  на микрок­  
апчици  по време  на опита  с разклащане  в стъкленица , могат  да бъдат  
намалени  чрез предложения  тук опит  с бавно  разбъркване . При опита  с 
бавно  разбъркване  водата , 1-октанолът  и изпитваното  вещество  се 
уравновесяват  в термостатиран  реакционен  съд с разбъркване . 
Обменът  между  фазите  се ускорява  чрез разбъркване . Разбъркването  
предизвиква  ограничена  турбулентност , която  засилва  обмена  между  
1-октанола  и водата , без да се образуват  микрокапчици  (1). 
ПРИЛОЖИМОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
10. Тъй като наличието  на вещества , различни  от изпитваното  вещество , 
може  да повлияе  на коефициента  на активност  на изпитваното  
вещество , същото  трябва  да се изследва  като чисто  вещество . За 
опита  по разпределение  1-октанол /вода  следва  да се използват  
вещества  с възможно  най-високата  предлагана  на пазара  чистота . 
11. Настоящият  метод  е приложим  за чисти  вещества , които  не са обект  на 
дисоциация  или асоциация  и не показват  значителна  повърхностна  
активност  на границата  между  двете  фази . Той може  да се прилага  за 
определяне  на съотношението  на разпределение  1-октанол /вода  за 
такива  вещества  и смеси . Когато  методът  се използва  за смеси , 
определените  съотношения  за разпределение  1-октанол /вода  са 
условни  и зависят  от химичния  състав  на изпитваната  смес  и от 
електролитния  състав , използван  като водна  фаза . Методът  е 
приложим  също  и за съединения , които  са обект  на дисоциация  или 
асоциация , ако се предприемат  допълнителни  стъпки  (точка  12).  
12. Поради  многобройните  равновесия  във вода  и 1-октанол , включени  в 
разпределението  1-октанол /вода  на вещества , които  са обект  на 
дисоциация , като органични  киселини  и феноли , органични  основи  и 
органометални  вещества , съотношението  на разпределение  1-окта­  
нол/вода  е условна  константа , която  зависи  в голяма  степен  от 
електролитния  състав  (7)(8). Поради  това при определянето  на съот­  
ношението  на разпределение  1-октанол /вода  се изисква  pH и електрол­  
итният  състав  да бъдат  контролирани  по време  на опита  и докладвани . 
При оценката  на тези съотношения  на разпределение  трябва  да се 
използва  експертна  преценка . С помощта  на стойността  на дисоциац­  
ионната  константа  (константи ) трябва  да се изберат  подходящи  
стойности  на pH, така че съотношението  на разпределение  да се 
определи  за всяко  йонизационно  състояние . При изпитване  на органом­  
етални  съединения  трябва  да се използват  буфери , които  не образуват  
комплексни  съединения  (8). Като  се вземат  предвид  съществуващите  
знания  в областта  на химията  на водата  (стабилитетни  константи , 
дисоциационни  константи ), условията  на опита  следва  да се изберат  
по такъв  начин , че да може  да бъде  направена  оценка  на химичния  
вид на изпитваното  вещество  във водната  фаза . Йонната  сила  следва  да 
бъде  еднаква  във всички  опити , като се използва  фонов  електролит . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 162
 
13. Могат  да възникнат  трудности  при провеждане  на изпитвания  на малко  
разтворими  във вода  вещества  или на такива  с висок  P OW поради  
факта , че концентрациите  във водата  стават  толкова  ниски , че се 
затруднява  точното  им определяне . В настоящия  метод  за изпитване  
са предоставени  указания  за решаване  на този проблем . 
ИНФОРМАЦИЯ  ОТНОСНО  ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
14. Чистотата  на химичните  реагенти  трябва  да бъде  с квалификация  „чист  
за анализ “ или по-висока . Препоръчва  се използването  на небелязани  
изпитвани  вещества  с известен  химичен  състав  и за предпочитане  с 
чистота  най-малко  99 %, или на белязани  изпитвани  вещества  с 
известни  химичен  състав  и радиохимична  чистота . В случай  на 
индикатори  за кратък  полуживот  следва  да се прилагат  корекции  за 
разпадане . В случай  на белязани  изпитвани  вещества  следва  да се 
използва  метод  за анализ , специфичен  за съответния  химикал , за да 
се гарантира , че измерената  радиоактивност  е пряко  свързана  с 
изпитваното  вещество . 
15. Прогнозен  log P  OW може  да се изчисли  чрез използването  на наличен  в 
търговската  мрежа  софтуер  за определяне  на log P  OW или чрез 
използване  на съотношението  на разтворимостта  в двата  разтворителя . 
16. Преди  да се проведе  опит  с бавно  разбъркване  за определяне  на P OW 
следва  да е налице  следната  информация  за изпитваното  вещество : 
а) структурна  формула ; 
б) подходящи  методи  за анализ  за определяне  на концентрацията  на 
веществото  във вода  и в 1-октанол ; 
в) дисоциационна  константа  (константи ) на вещества , които  могат  да 
съществуват  в йонизирано  състояние  (Указание  112 на ОИСР ) (9);  
г) разтворимост  във вода  (10);  
д) абиотична  хидролиза  (11);  
е) готова  биоразложимост  (12);  
ж) парно  налягане  (13).  
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Оборудване  и прибори  
17. Необходимо  е стандартно  лабораторно  оборудване , по-специално  
следното : 
— за разбъркване  на водната  фаза  се използват  магнитни  смесители  и 
покрити  с тефлон  магнитни  бъркалки , 
— прибори  за анализ , подходящи  за определяне  на концентрацията  на 
изпитваното  вещество  при очакваните  концентрации , 
— съд за разбъркване  с изпускателен  кран  на дъното . В зависимост  от 
очакваните  стойности  на log P  OW и границата  на откриване  (ГО) на 
изпитваното  съединение , трябва  да се предвиди  използване  на 
реакционен  съд със същата  конфигурация , с вместимост  над един  
литър , за да може  да се набави  достатъчно  количество  вода  за 
химична  екстракция  и анализ . Вследствие  на това във водния  
екстракт  ще се получат  по-високи  концентрации , а оттам  и по- 
надеждно  аналитично  определяне . В допълнение  1 е дадена  
таблица  за изчисляване  на минималния  необходим  обем , ГО на 
съединението , неговият  очакван  log P  OW и разтворимостта  му във 
вода . Таблицата  е основана  на връзката  между  log P  OW и съотнош­  
ението  между  разтворимостите  в октанол  и във вода , както  е 
представено  от Pinsuwan et al. (14):  
log P  OW ¼ 0; 88 log SR þ 0; 41 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 163
 
където  
SR ¼ S oct=S w (в mol/l),  
и на връзката , посочена  от Lyman (15), за прогнозиране  на разт­  
воримостта  във вода . Разтворимостта  във вода , изчислена  чрез 
уравнението , дадено  в допълнение  1, трябва  да се счита  за първон­  
ачална  оценка . Следва  да се отбележи , че потребителят  е свободен  
да изчисли  прогноза  за разтворимостта  във вода  чрез всякакво  
отношение , за което  се счита , че представя  по-добре  връзката  
между  хидрофобност  и разтворимост . За твърди  съединения  се 
препоръчва  например  включването  на точка  на топене  при прог­  
нозиране  на разтворимостта . В случай  че се използва  изменено  
уравнение , следва  да се потвърди , че уравнението  за изчисляване  
на разтворимостта  в октанол  продължава  да е валидно . В 
допълнение  2 е представен  схематичен  чертеж  на покрит  със 
стъкло  съд за разбъркване  с обем  приблизително  един  литър . 
Пропорциите  на съда , показан  в допълнение  2, са доказани  като 
подходящи  и следва  да се запазят , когато  се използва  апаратура  с 
различни  размери , 
— от съществено  значение  е по време  на опита  с бавно  разбъркване  да 
има средство  за поддържане  на постоянна  температура . 
18. Съдовете  следва  да са изработени  от инертен  материал , така че 
адсорбцията  от повърхността  на съда  да бъде  пренебрежимо  малка . 
Приготвяне  на разтворите  за изпитване  
19. Определянето  на P OW следва  да се извършва  с възможно  най-чистия  1- 
октанол , който  се предлага  в търговската  мрежа  (най-малко  +99 %). 
Препоръчва  се пречистване  на 1-октанол  чрез екстракция  с киселина , 
основа  и вода  и последващо  изсушаване . Освен  това за пречистване  на 
1-октанол  може  да се използва  и дестилация . Пречистеният  1-октанол  
се използва  за приготвяне  на стандартни  разтвори  на изпитваните  
вещества . Водата , която  се използва  при определянето  на P OW , следва  
да бъде  дестилирана  в стъклен  или кварцов  съд, или получена  от преч­  
истваща  система , или може  да се използва  вода  с чистота  „за HPLC“. 
За дестилираната  вода  е нужно  филтруване  през 0,22 μm филтър  и 
следва  да се включат  празни  проби , за да се провери  дали  няма  
наличие  на примеси , които  могат  да взаимодействат  с изпитваното  
вещество  в концентрираните  екстракти . Ако се използва  филтър  от 
стъклена  вата, той трябва  да бъде  почистен  чрез нагряване  най-малко  
за три часа при температура  400 °C.  
20. И двата  разтворителя  се насищат  взаимно  преди  опита  чрез уравнов­  
есяването  им в достатъчно  голям  съд. Това  се постига  чрез бавно  
разбъркване  на двуфазовата  система  в продължение  на два дни. 
21. Избира  се подходяща  концентрация  на изпитваното  вещество  и същото  
се разтваря  в 1-октанол  (наситен  с вода ). Коефициентът  на 
разпределение  1-октанол /вода  трябва  да бъде  определен  в разредени  
разтвори  в 1-октанол  и вода . Поради  това концентрацията  на 
изпитваното  вещество  не бива  да превишава  70 % от разтворимостта  
му с максимална  концентрация  от 0,1 mol/l във всяка  фаза  (1). Разт­  
ворите  на 1-октанол , използвани  в опита , не трябва  да съдържат  твърдо  
изпитвано  вещество  под форма  на суспензия . 
22. Подходящото  количество  изпитвано  вещество  се разтваря  в 1-октанол  
(наситен  с вода ). Ако очакваната  стойност  на P OW е по-висока  от пет, 
следва  да се вземат  мерки  разтворите  на 1-октанол , използвани  за 
опита , да не съдържат  твърдо  изпитвано  вещество  под форма  на 
суспензия . За тази цел се използва  следната  процедура  за химикали  с 
очаквана  стойност  на log P  OW > 5: 
— изпитваното  вещество  се разтваря  в 1-октанол  (наситен  с вода ), ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 164
 
— разтворът  се оставя  за достатъчно  дълъг  период , докато  
суспендираното  твърдо  вещество  се отдели . По време  на отделянето  
се наблюдава  концентрацията  на изпитваното  вещество , 
— след  като измерените  концентрации  в разтвора  на 1-октанол  
достигнат  стабилни  стойности , изходният  разтвор  се разрежда  с 
подходящ  обем  от 1-октанол , 
— измерва  се концентрацията  на разредения  изходен  разтвор . Ако 
измерената  концентрация  съответства  на разреждането , разреденият  
изходен  разтвор  може  да бъде  използван  в опита  с бавно  
разбъркване . 
Екстракция  и анализ  на пробите  
23. За анализ  на изпитваното  вещество  следва  да се използва  валидиран  
метод  за анализ . Изследващите  трябва  да представят  доказателство , че 
по време  на опита  концентрациите  във фазата  на наситения  с вода  1- 
октанол , както  и във фазата  на наситената  с 1-октанол  вода , са над 
границата  на количествено  определяне  на метода  за използваните  анал­  
итични  процедури . Аналитичните  добиви  на изпитваното  вещество  от 
водната  фаза  и от фазата  на 1-октанол  трябва  да бъдат  установени  
преди  опита  в случаите , когато  са необходими  методи  за екстракция . 
Аналитичният  сигнал  трябва  да бъде  коригиран  за празни  проби  и 
трябва  да се вземат  мерки  да няма  нежелан  пренос  на аналит  от една  
проба  в друга . 
24. Съществува  вероятност  преди  анализа  да се наложат  екстракция  на 
водната  фаза  с органичен  разтворител  и предварителна  концентрация  
на екстракта  поради  твърде  ниските  концентрации  на хидрофобни  
изпитвани  вещества  във водната  фаза . По същата  причина  е необ­  
ходимо  да се намалят  евентуални  концентрации  на празни  проби . За 
тази цел е нужно  да се използват  разтворители  с висока  чистота , за 
предпочитане  разтворители  за анализ  на остатъчни  количества . Освен  
това, работата  с предварително  внимателно  почистени  стъклени  съдове  
(напр . измити  с разтвор  или нагрети  при висока  температура ) може  да 
допринесе  за избягване  на кръстосано  замърсяване . 
25. Прогнозни  стойности  на log P  OW могат  да бъдат  получени  от програма  
за прогнози  или чрез експертна  оценка . Ако стойността  е по-висока  от 
шест , трябва  да се наблюдават  внимателно  корекциите  на празните  
проби  и нежеланият  пренос  на аналит . По подобен  начин , ако прог­  
нозната  стойност  на log P  OW надвишава  шест , е задължително  
използването  на репрезентативно  за физичните  и химичните  свойства  
на аналита  вещество  (сурогат ) като стандарт  за коригиране  на добива , 
за да може  да бъде  достигната  висока  кратност  на предварителна  
концентрация . В търговската  мрежа  се предлагат  редица  софтуерни  
програми  за прогнозиране  на стойността  на log P  OW ( 1 ), например  
Clog P (16), KOWWIN (17), ProLogP (18) и ACD log P (19). 
Описания  на подходите  за прогнозиране  могат  да бъдат  намерени  в 
източници  (20—22) от препратките . 
26. Границите  на количествено  определяне  (ГКО ) за определянето  на 
изпитваното  вещество  в 1-октанол  и вода  се установяват  чрез 
възприети  методи . Като  практическо  правило , границата  на колич­  
ествено  определяне  на метода  може  да бъде  определена  като конце­  
нтрацията  във вода  или 1-октанол , която  произвежда  съотношение  на 
сигнал  към шум , равно  на десет . Следва  да бъде  избран  подходящ  
метод  за екстракция  и предварителна  концентрация  и да бъдат  
определени  аналитични  добиви . Избира  се подходяща  кратност  за 
предварителна  концентрация , за да се получи  сигнал  с необходимия  
размер  при аналитичното  определяне . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 165  
( 1 ) Тази  информация  се предоставя  само  за удобство  на потребителите . Могат  да се 
използват  други  еквивалентни  компютърни  програми , ако се докаже , че дават  
същите  резултати .
 27. Въз основа  на параметрите  на метода  за анализ  и на очакваните  конце­  
нтрации  се определя  приблизителният  размер  на пробата , необходим  за 
точно  определяне  на концентрацията  на съединението . Трябва  да се 
избягва  използването  на водни  проби , които  са твърде  малки  за 
получаване  на достатъчен  аналитичен  сигнал . Трябва  да се избягва  и 
използването  на прекалено  големи  водни  проби , тъй като в противен  
случай  е възможно  да остане  твърде  малко  вода  за изисквания  
минимален  брой  анализи  (n = 5). В допълнение  1 минималният  обем  
на пробата  е посочен  като функция  от обема  на съда , ГО на 
изпитваното  вещество  и разтворимостта  на изпитваното  вещество . 
28. Количественото  определяне  на изпитваните  вещества  става  чрез 
сравняване  с калибрационните  криви  на съответното  съединение . 
След  концентрациите  в анализираните  проби  в скоби  трябва  да се 
посочат  стандартните  концентрации . 
29. За изпитвани  вещества  с прогнозна  стойност  на log P  OW по-висока  от 
шест , във водната  проба  трябва  да се добави  стандарт  от сурогат  преди  
екстракцията , за да бъдат  регистрирани  загубите , настъпващи  по време  
на екстракцията  и на предварителната  концентрация  на водните  проби . 
За точна  корекция  на добива  сурогатите  трябва  да притежават  
свойства , които  да са много  близки  до или идентични  с тези на 
изпитваното  вещество . За тази цел се предпочита  използването  на (ста­ 
билни ) изотопно  белязани  аналози  на въпросните  вещества  (например , 
предварително  обработени  с деутерий  или белязани  с 13 C). Ако 
използването  на белязани  стабилни  изотопи , т.е. 13 C или  2 H, не е 
възможно , надеждни  данни  в литературата  трябва  да доказват , че 
физичните  и химичните  свойства  на сурогата  са много  близки  до 
тези на изпитваното  вещество . По време  на течно -течна  екстракция  
от водната  фаза  могат  да се образуват  емулсии . Те могат  да бъдат  
намалени  чрез добавяне  на сол и оставяне  на емулсията  да се отдели  
през нощта . Методите , използвани  за екстракция  и предварителна  
концентрация  на пробите , трябва  да бъдат  докладвани . 
30. При необходимост  пробите , взети  от фазата  на 1-октанол , могат  да 
бъдат  разредени  с подходящ  разтворител  преди  анализа . Освен  това, 
използването  на стандарти  от сурогат  за корекция  на добива  се 
препоръчва  за вещества , за които  опитите  за добива  са показали  
висока  степен  на колебание  (относително  стандартно  отклонение  > 
10 %).  
31. Подробната  информация  по метода  за анализ  трябва  да бъде  
докладвана . Това  включва  метод  на екстракция , кратност  на предварит­  
елната  концентрация  и разреждането , параметри  на инструментите , 
процедура  за калибриране , калибрационен  обхват , аналитичен  добив  
на изпитваното  вещество  от вода , добавяне  на стандарти  от сурогат  
за корекция  на добива , стойности  на празни  проби , граници  на 
откриване  и на количествено  определяне . 
Извършване  на изпитването  
Оптимални  обемни  съотношения  1-октанол /вода  
32. При избора  на водата  и 1-октанола  следва  да бъдат  разгледани  ГКО  в 
1-октанол  и вода , кратността  на предварителната  концентрация , 
прилагана  към водните  проби , обемите  на пробите  в 1-октанол  и 
вода , и очакваните  концентрации . Поради  експериментални  причини , 
обемът  на 1-октанол  в системата  за бавно  разбъркване  следва  да бъде  
избран  така, че слоят  от 1-октанол  да бъде  достатъчно  дебел  (> 0,5 cm), 
за да може  да бъде  взета  проба  от фазата  на 1-октанол  без слоят  да 
бъде  нарушен . 
33. Типичните  фазови  съотношения , използвани  за определянето  на 
съединения  с log P  OW 4,5 и по-висок , са от 20 до 50 ml 1- октанол  и 
от 950 до 980 ml вода  в съд от един  литър . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 166
 
Условия  на изпитването  
34. По време  на изпитването  реакционният  съд е термостатиран , за да се 
намалят  колебанията  на температурата  до под 1 °C. Анализът  трябва  да 
се извършва  при температура  25 °C.  
35. Експерименталната  система  следва  да бъде  предпазена  от дневна  
светлина , като опитът  се провежда  в тъмна  стая или чрез покриване  
на реакционния  съд с алуминиево  фолио . 
36. Опитът  следва  да бъде  извършен  в обезпрашена  (доколкото  е 
възможно ) среда . 
37. Системата  1-октанол —вода  се разбърква , докато  се постигне  
равновесие . При пилотен  опит  продължителността  на периода  за 
уравновесяване  се преценява  чрез извършване  на опит  с бавно  
разбъркване  и периодично  вземане  на проби  от 1-октанол  и вода . 
Времевите  точки  за пробовземането  трябва  да бъдат  на интервал  най- 
малко  от пет часа. 
38. Всяко  определяне  на P OW трябва  да бъде  извършвано , като се направят  
поне  три независими  един  от друг  опита  на бавно  разбъркване . 
Определяне  на времето  за уравновесяване  
39. Приема  се, че равновесието  е достигнато , когато  след  регресионен  
анализ  на отношението  на концентрациите  1-октанол /вода  за период  с 
четири  времеви  точки  се получи  наклон , който  не се различава  знач­  
ително  от нула  на p-ниво  0,05. Минималното  време  за уравновесяване  е 
един  ден преди  да започне  вземането  на пробите . Като  практическо  
правило , вземането  на проби  от вещества  с прогнозна  стойност  на 
log P  OW по-малка  от пет може  да стане  през втория  и третия  ден. 
Може  да се наложи  уравновесяването  за по-хидрофобни  съединения  
да бъде  удължено . За съединение  с log P  OW 8,23 (декахлоробифенил ) 
бяха  достатъчни  144 часа за уравновесяване . Постигането  на 
равновесие  се оценява  чрез повтарящо  се пробовземане  от един  и 
същ съд. 
Започване  на опита  
40. В началото  на опита  реакционният  съд се напълва  с вода , наситена  с 1- 
октанол . Оставя  се достатъчно  време , за да се достигне  термост­  
атираната  температура . 
41. В реакционния  съд внимателно  се добавя  желаното  количество  
изпитвано  вещество  (разтворено  в необходимото  количество  1- 
октанол , наситен  с вода ). Тази  стъпка  е от решаващо  значение  за 
опита , тъй като трябва  да се избягва  турбулентно  смесване  на двете  
фази . За тази цел фазата  на 1-октанол  може  да бъде  добавена  бавно  с 
пипета  върху  стената  на опитния  съд, близо  до водната  повърхност . 
Вследствие  на това тя ще потече  по стъклената  стена  и ще образува  
слой  над водната  фаза . Декантацията  на 1-октанол  директно  в 
стъкленицата  трябва  да се избягва  във всички  случаи ; не бива  да се 
допуска  капки  1-octanol да падат  директно  във водата . 
42. След  като започне  разбъркването , скоростта  на разбъркване  трябва  да 
се увеличава  бавно . Ако двигателите  за разбъркване  не могат  да бъдат  
настроени  подходящо , следва  да бъде  разгледано  използването  на 
трансформатор . Скоростта  на разбъркване  трябва  да се настрои  така, 
че на разделящата  повърхност  между  водата  и 1-октанола  да се 
образува  водовъртеж  с максимална  дълбочина  от 0,5 до 2,5 cm. 
Скоростта  на разбъркване  трябва  да се намали , ако дълбочината  на 
водовъртежа  превиши  2,5 cm; в противен  случай  от капчици  1- 
октанол  във водната  фаза  могат  да се образуват  микрокапчици , което  
ще доведе  до завишена  оценка  на концентрацията  на изпитваното  
вещество  във водата . Препоръчва  се максимална  скорост  на 
разбъркване , при която  се образува  водовъртеж  с дълбочина  2,5 cm 
въз основа  на резултатите  от изследването  за валидиране  чрез 
кръгово  изпитване  (5). Така  се прави  компромис  с постигането  на 
бързо  уравновесяване , като същевременно  се ограничава  образуването  
на микрокапчици  от 1-октанол . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 167
 
Вземане  на проби  и обработка  на пробите  
43. Уредът  за разбъркване  следва  да се изключи  преди  пробовземането  и 
да се изчака  до преустановяване  на движението  на течностите . След  
като пробовземането  завърши , уредът  за разбъркване  бавно  се пуска  
отново , както  е описано  по-горе, а след  това скоростта  на разбъркване  
постепенно  се увеличава . 
44. Пробовземане  от водната  фаза  се извършва  от спирателния  кран  в 
дъното  на реакционния  съд. Винаги  се изхвърля  мъртвият  обем  вода , 
събран  в крановете  (приблизително  5 ml в съда, показан  в допълнение  2). 
Водата  в крановете  не се разбърква  и поради  това не е в равновесие  с 
основната  маса . Отбележете  обема  на водните  проби  и се погрижете  
количеството  изпитвано  вещество , налично  в изхвърлената  вода , да 
бъде  отчетено , когато  се изготвя  масовият  баланс . Загубите  от 
изпаряване  следва  да бъдат  сведени  до минимум , като се позволи  
водата  да тече бавно  в разделителната  фуния , така че да не се наруши  
слоят  вода /1-октанол . 
45. Пробите  от 1-октанол  се вземат  чрез изтегляне  на малка  аликвотна  част 
(приблизително  100 μl) от слоя  1-октанол  с изцяло  стъклено -метална  
100 микролитрова  спринцовка . Трябва  да се внимава  да не се наруши  
границата . Записва  се обемът  на взетата  за проба  течност . Малка  
аликвотна  част е достатъчна , тъй като пробата  от 1-октанол  ще бъде  
разредена . 
46. Трябва  да се избягват  ненужни  стъпки  по прехвърляне  на пробата . За 
тази цел обемът  на пробата  следва  да се определи  гравиметрично . При 
водни  проби  това се постига , като водната  проба  се събере  в раздел­  
ителна  фуния , която  вече съдържа  необходимото  количество  разт­  
ворител . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
47. Според  настоящия  метод  за изпитване  P  OW се определя  чрез 
провеждане  на три опита  с бавно  разбъркване  (три опитни  единици ) 
с изследваното  съединение  при едни  и същи  условия . Регресията , 
използвана  за доказване  на достигането  на равновесие , следва  да се 
основава  на резултати  от поне  четири  определяния  на C O /C W в после­  
дователни  времеви  точки . Това  позволява  да се изчисли  дисперсията  
като мярка  за неопределеност  на средната  стойност , получена  от всяка  
опитна  единица . 
48. P  OW може  да се характеризира  с дисперсията  на данните , получени  за 
всяка  опитна  единица . Тази  информация  се използва , за да се изчисли  
P OW като средно  претеглената  стойност  на резултатите  от отделните  
опитни  единици . За да се направи  това като тежест  се използва  
реципрочната  стойност  на дисперсията  на резултатите  от опитните  
единици . В резултат  на това данните  с големи  колебания  (изразени  
като дисперсия ), които  следователно  са по-ненадеждни , оказват  по- 
слабо  влияние  върху  резултата , отколкото  данни  с малка  дисперсия . 
49. Аналогично  се изчислява  и претегленото  стандартно  отклонение . То 
характеризира  повторяемостта  на измерването  на P  OW . Ниска  
стойност  на претегленото  стандартно  отклонение  показва , че 
определянето  на P OW е с голяма  повторяемост  в рамките  на една  
лаборатория . Формалната  статистическа  обработка  на данните  е 
изложена  по-долу . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 168
 
Обработка  на резултатите  
Доказателство  за постигане  на равновесие  
50. Логаритъмът  на съотношението  на концентрациите  на изпитваното  
вещество  в 1-октанол  и във вода  (log (C  O /C w )) се изчислява  за всяка  
времева  точка  на пробовземане . Постигането  на химично  равновесие  се 
доказва , като съотношението  се представя  графично  като функция  на 
времето . Ако се получи  плато  при това графично  представяне  въз 
основа  на поне  четири  поредни  времеви  точки , това показва , че е дост­  
игнато  равновесие  и съединението  е напълно  разтворено  в 1-октанол . В 
противен  случай  изпитванията  трябва  да продължат , докато  наклонът  в 
четири  поредни  времеви  точки  не се различава  значително  от 0 на 
p-ниво  0,05, което  показва , че log C  o /C w не зависи  от времето . 
Изчисляване  на log P  OW 
51. Стойността  на log P  OW на опитната  единица  се изчислява  като средно  
претеглената  стойност  на log C  o /C w за тази част от кривата  на log 
C o /C w спрямо  времето , за която  е установено  равновесие . Средно  прет­  
еглената  стойност  се изчислява  чрез претегляне  на данните  с 
реципрочната  стойност  на дисперсията , за да може  влиянието  на 
данните  върху  окончателния  резултат  да е обратнопропорционално  на 
неопределеността  на данните . 
Среден  log P  OW 
52. Средната  стойност  на log P  OW на различните  опитни  единици  се 
изчислява  като средна  стойност  на резултатите  от отделните  опитни  
единици , претеглени  със съответните  им дисперсии . 
Изчислението  се извършва  по следната  формула : 
log P  OW ;Av ¼ ðΣw i Ü log P  OW ;i Þ Ü ðΣw i Þ –1 
където  
log P  OW,i = стойността  на log P  OW на отделната  опитна  единица  i; 
log P  OW,Av  = средно  претеглената  стойност  на отделните  определяния  
на log P  OW ; 
w i = статистическата  тежест , дадена  на стойността  на log P  OW 
на опитната  единица  i. 
Реципрочната  стойност  на дисперсията  на log P  OW,i се използва  като 
(w i (w i ¼ varðlogP  OW ;i Þ –1 ). 
53. Грешката  в средната  стойност  на log P  OW се оценява  като 
повторяемостта  на log C  o /C w , определена  по време  на равновесната  
фаза  в отделните  опитни  единици . Тя се изразява  като претегленото  
стандартно  отклонение  на log P  OW,Av  (σ log Pow,Av  ), което  на свой  ред е 
мярка  за грешката , свързана  с P OW,Av  . Претегленото  стандартно  
отклонение  може  да бъде  изчислено  от претеглената  дисперсия  (var  log 
Pow,Av  както  следва : 
var log Pow ;Av ¼ ðΣw i Ü ðlog P  OW ;i Ä log P  OW ;Av Þ 2 Þ Ü ðΣw i Ü ðn Ä 1ÞÞ –1 
σ log Pow ;Av ¼ ðvar log Pow ;Av Þ 0;5 
Със символа  n се обозначава  броят  на опитните  единици . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 169
 
Доклад  от изпитването  
54. Докладът  от изпитването  включва  следната  информация : 
Изпитвано  вещество : 
— общоприето  наименование , химично  наименование , номер  по CAS, 
структурна  формула  (указваща  положение  на белязаната  част, 
когато  се използва  белязано  вещество ) и отосими  физични  и 
химични  свойства  (вж. точка  17),  
— чистота  (примеси ) на изпитваното  вещество , 
— чистота  на белязаната  част на белязаните  химикали  и моларна  
активност  (където  е уместно ), 
— първоначалната  оценка  на log P  OW , както  и методите , използвани  за 
получаване  на стойността . 
Условия  на изпитването : 
— дати  на извършване  на изследванията , 
— температура  по време  на опита , 
— обеми  1-октанол  и вода  в началото  на изпитването , 
— обеми  на взетите  проби  от 1-октанол  и вода , 
— обеми  1-октанол  и вода , останали  в съдовете , в които  се извършва  
изпитването , 
— описание  на използваните  съдове  за изпитване  и условия  за 
разбъркване  (конструкция  на бъркалката  и на съда  за изпитване , 
височина  на водовъртежа  в mm и, когато  е налична : скорост  на 
разбъркването ), 
— методи  за анализ , използвани  за определяне  на изпитваното  
вещество , и граница  на количествено  определяне  за съответния  
метод , 
— време  на вземане  на пробите , 
— pH на водната  фаза  и използваните  буфери , когато  pH е регулирано  
за молекули , които  могат  да съществуват  в йонизирано  състояние , 
— брой  на повторенията . 
Резултати : 
— повторяемост  и чувствителност  на използваните  методи  за анализ , 
— концентрации  на изпитваното  вещество , определени  в 1-октанол  и 
вода  като функция  на времето , 
— доказване  на масовия  баланс , 
— температура  и стандартно  отклонение  или обхват  на 
температурните  стойности  по време  на опита , 
— регресия  на съотношението  на концентрациите  като функция  на 
времето , 
— средната  стойност  на log P  ow,Av  и стандартната  ѝ грешка , 
— обсъждане  и интерпретиране  на резултатите , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 170
 
— примери  за необработени  данни  от представителен  анализ  (всички  
необработени  данни  трябва  да се съхраняват  съгласно  стандартите  
за добри  лабораторни  практики ), включително  добиви  на сурогати , 
брой  на нивата , използвани  за калибриране  (заедно  с критериите  за 
корелационния  коефициент  на калибрационната  крива ), и резултати  
от осигуряването  на качеството /контрола  на качеството , 
— когато  е наличен : доклад  за валидиране  на процедурата  за 
извършване  на анализа  (да се посочи  в препратките ). 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) De Bruijn JHM, Busser F, Seinen W, Hermens J. (1989). Determination of 
octanol/water partition coefficients with the ’slow-stirring’ method. Environ. Toxicol. Chem. 8: 499-512.
 
(2) Глава  А.8. „Коефициент  на разпределение “ от настоящото  прил­  
ожение . 
(3) Глава  А.8. „Коефициент  на разпределение “ от настоящото  прил­  
ожение . 
(4) OECD (2000). OECD Draft Guideline for the Testing of Chemicals: 122 
Partition Coefficient (n-Octanol/Water): pH-Metric Method for Ionisable 
Substances. Paris.  
(5) Tolls J (2002). Partition Coefficient 1-Octanol/Water (Pow) Slow-Stirring 
Method for Highly Hydrophobic Chemicals, Validation Report. RIVM contract-Nrs 602730 M/602700/01.
 
(6) Boethling RS, Mackay D (eds.) (2000). Handbook of property estimation 
methods for chemicals. Lewis Publishers Boca Raton, FL, USA.  
(7) Schwarzenbach RP, Gschwend PM, Imboden DM (1993). Environmental 
Organic Chemistry. Wiley, New York, NY.  
(8) Arnold CG, Widenhaupt A, David MM, Müller SR, Haderlein SB, Schwar ­
zenbach RP (1997). Aqueous speciation and 1-octanol-water partitioning of 
tributyl- and triphenyltin: effect of pH and ion composition.  Environ. Sci. 
Technol.  31: 2596-2602.  
(9) OECD (1981) OECD Guidelines for the Testing of Chemicals: 112 Disso ­
ciation Constants in Water. Paris.  
(10) Глава  А.6. „Разтворимост  във вода “ от настоящото  приложение . 
(11) Глава  В.7. „Разграждане  — абиотично  разграждане : хидролиза  като 
функция  от рН“ от настоящото  приложение . 
(12) Глава  В.4. „Определяне  на пряката  биологична  разградимост “ — части  
II—VII ( методи  от А до Е) от настоящото  приложение . 
(13) Глава  А.4. „Налягане  на парите “ от настоящото  приложение . 
(14) Pinsuwan S, Li A and Yalkowsky S.H. (1995). Correlation of octanol/water 
solubility ratios and partition coefficients,  J. Chem. Eng. Data.  40: 623- 
626. 
(15) Lyman WJ (1990). Solubility in water. In: Handbook of Chemical Property 
Estimation Methods: Environmental Behavior of Organic Compounds, 
Lyman WJ, Reehl WF, Rosenblatt DH, Eds. American Chemical Society, 
Washington, DC, 2-1 to 2-52.  
(16) Leo A, Weininger D (1989). Medchem Software Manual. Daylight 
Chemical Information Systems, Irvine, CA.  
(17) Meylan W (1993). SRC-LOGKOW for Windows. SRC, Syracuse, N.Y.  
(18) Compudrug L (1992). ProLogP. Compudrug, Ltd, Budapest.  
(19) ACD. ACD logP; Advanced Chemistry Development: Toronto, Ontario 
M5H 3V9, Canada, 2001.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 171
 
(20) Lyman WJ (1990). Octanol/water partition coefficient. In Lyman WJ, 
Reehl WF, Rosenblatt DH, eds,  Handbook of chemical property estimation , 
American Chemical Society, Washington, D.C.  
(21) Rekker RF, de Kort HM (1979). The hydrophobic fragmental constant: An 
extension to a 1 000 data point set.  Eur. J. Med. Chem. Chim. Ther.  14: 
479-488.  
(22) Jübermann O (1958). Houben-Weyl, ed,  Methoden der Organischen 
Chemie : 386-390.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 172
 
Допълнение  1 
Таблица  за изчисляване  на минималния  обем  вода , необходим  за 
откриване  на изпитвани  вещества  с различни  стойности  на log P  OW 
във водната  фаза  
Допускания : 
— Максимален  обем  на отделните  аликвотни  части  = 10 % от общия  обем ; 
5 аликвотни  части  = 50 % от общия  обем . 
— Концентрация  на изпитваното  вещество  = 0,7 × разтворимост  във всяка  
фаза . В случай  на по-ниски  концентрации  ще са необходими  по-големи  
обеми . 
— Обем , използван  за определянето  на ГО = 100 ml.  
— log P  ow спрямо  log S  w и log P  ow спрямо  SR (S  oct /S w ) са репрезентативни  
в разумна  степен  за взаимовръзките  по отношение  на изпитваните  
съединения . 
Оценка  на S w 
log P  ow уравнение  log S  w S w (mg/l)  
4 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 0,496 3,133E+00 
4,5 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 0,035 1,084E+00 
5 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 – 0,426 3,750E-01 
5,5 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 – 0,887 1,297E-01 
6 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 – 1,348 4,487E-02 
6,5 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 – 1,809 1,552E-02 
7 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 – 2,270 5,370E-03 
7,5 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 – 2,731 1,858E-03 
8 ð –Þ0; 922 Ü log P  ow þ 4; 184 – 3,192 6,427E-04  
Оценка  на S oct 
log P  ow уравнение  S  oct (mg/l)  
4 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 41 3,763E+04 
4,5 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 42 4,816E+04 
5 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 43 6,165E+04 
5,5 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 44 7,890E+04 
6 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 45 1,010E+05 
6,5 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 46 1,293E+05 
7 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 47 1,654E+05 
7,5 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 48 2,117E+05 
8 log P  ow ¼ 0; 88log SR þ 0; 49 2,710E+05  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 173
 
Обща  маса  на 
изпитваното  
вещество  
(mg) Маса  окт /Маса  вода Маса  H2O 
(mg) Конц  H2O 
(mg/l) Маса  окт 
(mg) Конц  окт 
(mg/l)  
1 319 526 2,5017 2,6333 1 317 26 333 
1 686 1 664 1,0127 1,0660 1 685 33 709 
2 158 5 263 0,4099 0,4315 2 157 43 149 2 762 16 644 0,1659 0,1747 2 762 55 230 3 535 52 632 0,0672 0,0707 3 535 70 691 4 524 1664 36 0,0272 0,0286 4 524 90 480 5 790 5263 16 0,0110 0,0116 5 790 115 807 
7 411 1 664 357 0,0045 0,0047 7 411 148 223 
9 486 5 263 158 0,0018 0,0019 9 486 189 713
 
Изчисляване  на обеми  
Минимален  необходим  за фазата  на H 2 O обем  за всяка  концентрация  на ГО 
log K  ow ГО (microgram/l) → 0,001 0,01 0,10 1,00 10  
4 0,04 0,38 3,80 38 380 
4,5 0,09 0,94 9,38 94 938 
5 0,23 2,32 23,18 232 2 318 
5,5 0,57 5,73 57,26 573 5 726 
6 1,41 14,15 141 1 415 14 146 
6,5 3,50 34,95 350 3 495 34 950 
7 8,64 86,35 864 8 635 86 351 
7,5 21,33 213 2 133 21 335 213 346 
8 52,71 527 5 271 52 711 527 111 
Обем , 
използван  за 
ГО (l) 0,1 
Легенда  към изчисленията  
Представлява  < 10 % от общия  обем  на водната  фаза , съд за уравновесяване  с вместимост  1 
литър . 
Представлява  < 10 % от общия  обем  на водната  фаза , съд за уравновесяване  с вместимост  2 
литра . 
Представлява  < 10 % от общия  обем  на водната  фаза , съд за уравновесяване  с вместимост  5 
литра . 
Представлява  < 10 % от общия  обем  на водната  фаза , съд за уравновесяване  с вместимост  10 
литра . 
Надвишава  10 % дори  в съд за уравновесяване  10 литра . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 174
 
Обобщение  на необходимите  обеми  като  функция  на разтворимостта  във вода  и на log P  OW 
Минимален  необходим  за фазата  на H 2 O обем  за всяка  концентрация  на ГО (ml)  
log P  ow S w (mg/l) LOD (microgram/l) → 0,001 0,01 0,10 1,00 10  
4 10 0,01 0,12 1,19 11,90 118,99 
5 0,02 0,24 2,38 23,80 237,97 
3 0,04 0,40 3,97 39,66 396,62 1 0,12 1,19 11,90 118,99 1 189,86 
4,5 5 0,02 0,20 2,03 20,34 203,37 
2 0,05 0,51 5,08 50,84 508,42 1 0,10 1,02 10,17 101,68 1 016,83 
0,5 0,20 2,03 20,34 203,37 2 033,67 
5 1 0,09 0,87 8,69 86,90 869,01 
0,5 0,17 1,74 17,38 173,80 1 738,02 
0,375 0,23 2,32 23,18 231,75 2 317,53 
0,2 0,43 4,35 43,45 434,51 4 345,05 
5,5 0,4 0,19 1,86 18,57 185,68 1 856,79 
0,2 0,37 3,71 37,14 371,36 3 713,59 
0,1 0,74 7,43 74,27 742,72 7 427,17 
0,05 1,49 14,85 148,54 1 485,43 14 854,35 
6 0,1 0,63 6,35 63,48 634,80 6 347,95 
0,05 1,27 12,70 126,96 1 269,59 12 695,91 
0,025 2,54 25,39 253,92 2 539,18 25 391,82 
0,0125 5,08 50,78 507,84 5 078,36 50 783,64 
6,5 0,025 2,17 21,70 217,02 2 170,25 21 702,46 
0,0125 4,34 43,40 434,05 4 340,49 43 404,93 
0,006 9,04 90,43 904,27 9 042,69 90 426,93 0,003 18,09 180,85 1 808,54 18 085,39 180 853,86 
7 0,006 7,73 77,29 772,89 7 728,85 77 288,50 
0,003 15,46 154,58 1 545,77 15 457,70 154 577,01 
0,0015 23,19 231,87 2 318,66 23 186,55 231 865,51 
0,001 46,37 463,73 4 637,31 46 373,10 463 731,03 
7,5 0,002 19,82 198,18 1 981,77 19 817,73 198 177,33 
0,001 39,64 396,35 3 963,55 39 635,47 396 354,66 
0,0005 79,27 792,71 7 927,09 79 270,93 792 709,32
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 175
 
log P  ow S w (mg/l) LOD (microgram/l) → 0,001 0,01 0,10 1,00 10  
0,00025 158,54 1 585,42 15 854,19 158 541,86 1 585 418,63 
8 0,001 33,88 338,77 3 387,68 33 876,77 338 767,72 
0,0005 67,75 677,54 6 775,35 67 753,54 677 535,44 
0,00025 135,51 1 355,07 13 550,71 135 507,09 1 355 070,89 
0,000125 271,01 2 710,14 27 101,42 271 014,18 2 710 141,77 
Обем , използван  за ГО (l) 0,1.  
Допълнение  2 
Примерен  съд за изпитване , покрит  със стъкло , за опита  с бавно  
разбъркване  за определяне  на P OW
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 176
 
ЧАСТ  Б: МЕТОДИ  ЗА ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ТОКСИЧНОСТТА  И 
ДРУГИ  ЕФЕКТИ  ВЪРХУ  ЗДРАВЕТО  
СЪДЪРЖАНИЕ  
ОБЩО  ВЪВЕДЕНИЕ  
Б.1А. ОСТРА  ОРАЛНА  ТОКСИЧНОСТ  — ПРОЦЕДУРА  С 
ФИКСИРАНИ  ДОЗИ  
Б.1Б. ОСТРА  ОРАЛНА  ТОКСИЧНОСТ  — МЕТОД  КЛАС  ОСТРА  
ТОКСИЧНОСТ  
Б.2. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  (ИНХАЛАТОРНА ) 
Б.3. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  (ДЕРМАЛНА ) 
Б.4. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ : КОЖНО  ДРАЗНЕЩО /КОРОЗИВНО  
ДЕЙСТВИЕ  
Б.5. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ : ОЧНО  ДРАЗНЕЩО /КОРОЗИВНО  
ДЕЙСТВИЕ  
Б.6. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ  
Б.7. 28- ДНЕВНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА ОРАЛНАТА  ТОКСИЧНОСТ  
ПРИ  ГРИЗАЧИ  С ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
Б.8. СУБАКУТНА  ИНХАЛАТОРНА  ТОКСИЧНОСТ : 28-ДНЕВНО  
ИЗСЛЕДВАНЕ  
Б.9. ТОКСИЧНОСТ  (ДЕРМАЛНА ) С МНОГОКРАТНИ  ДОЗИ  (28 
ДНИ ) 
Б.10. МУТАГЕННОСТ  — ТЕСТ  IN VITRO  ЗА ХРОМОЗОМНИ  
АБЕРАЦИИ  ПРИ  БОЗАЙНИЦИ  
Б.11. МУТАГЕННОСТ  — ТЕСТ  IN VIVO  ЗА ХРОМОЗОМНИ  
АБЕРАЦИИ  В КОСТНИЯ  МОЗЪК  НА БОЗАЙНИЦИ  
Б.12. МУТАГЕННОСТ  — IN VIVO  МИКРОЯДРЕН  ТЕСТ  НА 
ЕРИТРОЦИТИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  
Б.13/14. МУТАГЕННОСТ  — БАКТЕРИИ  ЗА ТЕСТВАНЕ  НА 
ОБРАТНИ  МУТАЦИИ  
Б.15. ИЗПИТВАНЕ  ЗА МУТАГЕННОСТ  И ПРЕСЯВАЩО  
ИЗПИТВАНЕ  ЗА КАНЦЕРОГЕННОСТ  НА ГЕННИ  
МУТАЦИИ  — ЅАССНА RОМУСЕ S СЕREVISIAE  
Б.16. МИТОТИЧНИ  РЕКОМБИНАЦИИ  —  ЅАССНА RОМУСЕ S 
СЕREVISIAE  
Б.17. МУТАГЕННОСТ  — IN VITRO  ТЕСТ  ЗА КЛЕТЪЧНИ  ГЕННИ  
МУТАЦИИ  ПРИ  БОЗАЙНИЦИ  
Б.18. УВРЕЖДАНЕ  И РЕПАРАЦИЯ  НА ДНК  — НЕПЛАНИРАН  
СИНТЕЗ  НА ДНК  КЛЕТКИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  (IN VITRO ) 
Б.19. ИЗПИТВАНЕ  IN VITRO  ЗА ОБМЕНИ  НА СЕСТРИНСКИ  
ХРОМАТИДИ  
Б.20. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ПОЛОВО  СВЪРЗАНА  РЕЦЕСИВНА  
ЛЕТАЛНОСТ  ПРИ  DROSOPHILA MELANOGASTER  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 177
 
Б.21. ИЗПИТВАНИЯ  IN VITRO  ЗА ТРАНСФОРМАЦИИ  В 
КЛЕТКИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  
Б.22. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ДОМИНАНТНА  ЛЕТАЛНОСТ  ПРИ  
ГРИЗАЧИ  
Б.23. ТЕСТ  ЗА СПЕРМАТОГОНИАЛНИ  ХРОМОЗОМНИ  
АБЕРАЦИИ  ПРИ  БОЗАЙНИЦИ  
Б.24. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ПЕТНА  ПО КОЗИНАТА  ПРИ  МИШКИ  
Б.25. НАСЛЕДСТВЕНИ  ТРАНСЛОКАЦИИ  ПРИ  МИШКИ  
Б.26. ТЕСТВАНЕ  НА СУБХРОНИЧНА  ОРАЛНА  ТОКСИЧНОСТ  
— 90-ДНЕВНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА ТОКСИЧНОСТТА  ПРИ  
ГРИЗАЧИТЕ  С ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
Б.27. ИЗСЛЕДВАНЕ  НА СУБХРОНИЧНА  ОРАЛНА  
ТОКСИЧНОСТ  — 90-ДНЕВНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА ТОКСИЧ­  
НОСТТА  ПРИ  НЕ ГРИЗАЧИ  С ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
Б.28. ИЗПИТВАНЕ  ЗА СУБХРОНИЧНА  ДЕРМАЛНА  
ТОКСИЧНОСТ  — 90- ДНЕВНИ  МНОГОКРАТНИ  
ДЕРМАЛНИ  ДОЗИ  ПРИ  ГРИЗАЧИ  
Б.29. СУБХРОНИЧНА  ИНХАЛАТОРНА  ТОКСИЧНОСТ : 90- 
ДНЕВНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  
Б.30. ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА ХРОНИЧНА  ТОКСИЧНОСТ  
Б.31. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ОЦЕНКА  НА ТОКСИЧНОСТТА  ЗА 
ПРЕНАТАЛНОТО  РАЗВИТИЕ  
Б.32. ИЗСЛЕДВАНИЯ  ЗА КАНЦЕРОГЕННОСТ  
Б.33. КОМБИНИРАНИ  ИЗСЛЕДВАНИЯ  ЗА ХРОНИЧНА  
ТОКСИЧНОСТ /КАНЦЕРОГЕННОСТ  
Б.34. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА РАЗМНОЖАВАНЕТО  
В ЕДНО  ПОКОЛЕНИЕ  
Б.35. ИЗПИТВАНЕ  ЗА РЕПРОДУКТИВНА  ТОКСИЧНОСТ  В ДВЕ  
ПОКОЛЕНИЯ  
Б.36. ТОКСИКОКИНЕТИКА  
Б.37. ЗАБАВЕНА  НЕВРОТОКСИЧНОСТ  КЪМ  ОРГАНИЧНИ  
ФОСФОРСЪДЪРЖАЩИ  ВЕЩЕСТВА  СЛЕД  ОСТРО  
ИЗЛАГАНЕ  
Б.38. ЗАБАВЕНА  НЕВРОТОКСИЧНОСТ  КЪМ  ОРГАНИЧНИ  
ФОСФОРСЪДЪРЖАЩИ  ВЕЩЕСТВА  НА 28-ИЯ ДЕН  В 
ПРОУЧВАНЕ  ЗА ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
Б.39. ИЗПИТВАНЕ  ЗА НЕРЕПАРАТИВЕН  СИНТЕЗ  НА ДНК  
(НСД ) С ЧЕРНОДРОБНИ  КЛЕТКИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  IN 
VIVO  
Б.40. IN VITRO  КОЖНА  КОРОЗИЯ : ТРАНСКУТАННО  
ИЗМЕРВАНЕ  НА ЕЛЕКТРИЧЕСКОТО  СЪПРОТИВЛЕНИЕ  
НА КОЖАТА  (TER) 
Б.40А. IN VITRO  КОЖНА  КОРОЗИЯ : ИЗПИТВАНЕ  ВЪРХУ  МОДЕЛ  
НА ЧОВЕШКА  КОЖА  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 178
 
Б.41. IN VITRO  3T3 NRU ИЗПИТВАНЕ  ЗА ФОТОТОКСИЧНОСТ  
Б.42. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ : ИЗСЛЕДВАНЕ  НА 
ЛОКАЛНИТЕ  ЛИМФНИ  ВЪЗЛИ  
Б.43. НЕВРОТОКСИКОЛОГИЧНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  ПРИ  ГРИЗАЧИ  
Б.44. КОЖНА  АБСОРБЦИЯ : IN VITRO  МЕТОД  
Б.45. КОЖНА  АБСОРБЦИЯ : IN VIVO  МЕТОД  
Б.46. IN VITRO  КОЖНО  ДРАЗНЕНЕ : МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
ВЪРХУ  РЕКОНСТРУИРАН  ЧОВЕШКИ  ЕПИДЕРМИС  
Б.47. МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  НА НЕПРОЗРАЧНОСТ  И ПРОПУ­  
СКЛИВОСТ  НА ГОВЕЖДАТА  РОГОВИЦА  ЗА 
ИДЕНТИФИКАЦИЯ  НА ВЕЩЕСТВА  С КОРОЗИВНО  И 
ДРАЗНЕЩО  ДЕЙСТВИЕ  ВЪРХУ  ОЧИТЕ  
Б.48. МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  С ИЗОЛИРАНИ  ПТИЧИ  ОЧИ  ЗА 
ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ВЕЩЕСТВА  С КОРОЗИВНО  И СИЛНО  
ДРАЗНЕЩО  ДЕЙСТВИЕ  ВЪРХУ  ОЧИТЕ  
Б.49. ИЗПИТВАНЕ  IN VITRO  ЗА МИКРОЯДРА  НА КЛЕТКИ  ОТ 
БОЗАЙНИЦИ  
Б.50. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ : ИЗСЛЕДВАНЕ  НА 
ЛОКАЛНИТЕ  ЛИМФНИ  ВЪЗЛИ : DA 
Б.51. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ : ИЗСЛЕДВАНЕ  НА 
ЛОКАЛНИТЕ  ЛИМФНИ  ВЪЗЛИ : BRDU-ELISA  
▼M4 
Б.52. ОСТРА  ИНХАЛАТОРНА  ТОКСИЧНОСТ  — МЕТОД  КЛАС  
ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  
▼M5 
Б.53. ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА НЕВРОТОКСИЧНОСТ  ЗА 
РАЗВИВАЩИЯ  СЕ ОРГАНИЗЪМ  
Б.54. УТЕРОТРОФИЧНО  БИОЛОГИЧНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  ПРИ  
ГРИЗАЧИ : КРАТКОСРОЧНО  СКРИНИНГОВО  
ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА ЕСТРОГЕННИ  СВОЙСТВА  
Б.55. БИОЛОГИЧНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА HERSHBERGER ПРИ  
ПЛЪХОВЕ : КРАТКОСРОЧНО  СКРИНИНГОВО  
ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА (АНТИ )АНДРОГЕННИ  СВОЙСТВА  
Б.56. РАЗШИРЕНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА 
РЕПРОДУКЦИЯТА  В ЕДНО  ПОКОЛЕНИЕ  
Б.57. ИЗСЛЕДВАНЕ  НА СТЕРОИДОГЕНЕЗАТА  В H295R 
КЛЕТКИ  
Б.58. ИЗСЛЕДВАНИЯ  ЗА ГЕННИ  МУТАЦИИ  В СОМАТИЧНИ  И 
ЗАРОДИШНИ  КЛЕТКИ  ПРИ  ТРАНСГЕННИ  ГРИЗАЧИ  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 179
 
ОБЩО  ВЪВЕДЕНИЕ  
А. ХАРАКТЕРИСТИКА  НА ПРОУЧВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Преди  началото  на всяко  едно  проучване  на токсичност  следва  
да се знае съставът  на проучваното  вещество , включително  
основните  примеси , както  и съответстващите  физикохимични  
свойства , включително  стабилност . 
Физикохимичните  свойства  на проучваното  вещество  предо­  
ставят  важна  информация  за избор  на пътя  на прилагане  на 
веществото , за проектиране  на всяко  отделно  проучване , както  
и за начина  на работа  и съхранение  на проучваното  вещество . 
Създаването  на аналитичен  метод  за количествено  и качествено  
определяне  на проучваното  вещество  (включително  основните  
примеси , при възможност ) в средата  за дозиране , както  и в 
биологичния  материал , следва  да предхожда  началото  на 
проучването . 
Цялата  информация , отнасяща  се до идентифицирането , физик­  
охимичните  свойства , чистотата  и поведението  на проучваното  
вещество , следва  да бъде  включена  в доклада  за теста . 
Б. ГРИЖИ  ЗА ЖИВОТНИТЕ  
Строгият  контрол  на условията  на заобикалящата  среда  и 
техниката  за добри  грижи  към животните  са основни  изисквания  
за тестовете  върху  токсичност . 
i) Условия  на отглеждане  
Условията  на средата  в стаите  или определените  места  на 
експерименталните  животни  следва  да бъдат  подходящи  за 
проучваните  видове . Подходящи  условия  за плъхове , мишки  и 
морски  свинчета  са стайна  температура  – 22  o С ± 3  o С при 
относителна  влажност  от 30 до 70 %; за зайците  температурата  
следва  да бъде  20 + 3  o С при относителна  влажност  от 30 до 
70 %.  
Някои  експериментални  техники  са особено  чувствителни  към 
температурните  ефекти , ето защо  в такива  случаи  в описанието  
на тестовия  метод  се посочват  всички  подробности  за 
подходящите  условия . Във всички  изследвания  за токсични  
ефекти  температурата  и влажността  следва  да се мониторират , 
записват  и включат  в окончателния  доклад  на проучването . 
Осветлението  е изкуствено , последователността  е 12 часа 
светлина , 12 часа тъмнина . Подробностите , свързани  с начина  
на осветление , се записват  и включват  в окончателния  доклад  на 
проучването . 
Ако няма  други  изисквания , специални  за метода , животните  
могат  да се отглеждат  индивидуално  или в клетки  на малки  
групи  от един  и същи  пол; при групово  отглеждане  не бива  да 
има повече  от пет животни  в клетка . 
В докладите  за експериментални  животни  е важно  да се посочат  
видът  на клетката  и броят  на животните , обитаващи  всяка  една  
клетка , както  по време  на излагане  на действието  на химич­  
еското  вещество , така и в последвалия  период  на наблюдение . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 180
 
ii) Условия  на хранене  
Диетата  следва  да отговаря  на всички  хранителни  изисквания  на 
видовете , участващи  в теста . При прилагане  на проучваните  
вещества  в храната  на животните  хранителната  стойност  на 
последната  може  да бъде  намалена  поради  взаимодействие  
между  веществото  и хранителните  съставки . Възможността  за 
такава  реакция  следва  да се отчита  при интерпретиране  на 
резултатите  от теста . Уместно  е да се използват  конвенционални  
лабораторни  храни  при неограничено  количество  вода  за пиене . 
Изборът  на храната  се влияе  от необходимостта  да се осигури  
подходяща  смес  за проучваното  вещество  при прилаганата  му 
по този метод . 
Хранителните  примеси , за които  се знае, че влияят  на токсич­  
ността , не бива  да присъстват  в интерфериращи  концентрации . 
В. АЛТЕРНАТИВНО  ТЕСТВАНЕ  
Европейският  съюз  се е ангажирал  с насърчаване  на развитието  
и узаконяването  на алтернативни  техники , които  могат  да предо­  
ставят  същото  ниво  на информация , както  и настоящите  тестове  
с животни , но използват  по-малко  животни , причиняват  по- 
малко  страдание  или изобщо  избягват  употребата  на животни . 
След  като станат  достъпни , тези методи  трябва  да се имат  
предвид  винаги , когато  е възможно , за характеризиране  на 
риска  и последваща  класификация  и етикетиране  на съществени  
рискове . 
Г. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТАЦИЯ  
При оценка  и интерпретация  на тестовете  следва  да се има 
предвид  границата  на областта , до която  резултатите  от 
проучванията  сред  животни  и in vitro  могат  да бъдат  директно  
екстраполирани  към човека . Ето защо  данните  за наличие  на 
странични  ефекти  при хората , където  ги има, могат  да се 
използват  за потвърждение  на опитните  резултати . 
Д. ПРЕПРАТКИ  
Повечето  от тези методи  са създадени  в рамките  на програмата  
на ОИСР  за изработване  на ръководство  за тестове  и следва  да 
се прилагат  в съгласие  с принципите  за добрата  лабораторна  
практика , така че да се осигури  възможно  най-широко  
„взаимно  приемане  на данните “. 
Допълнителна  информация  може  да се намери  в препратките  на 
ръководството  на ОИСР , както  и в съответната  литература , 
публикувана  на други  места . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 181
 
Б.1А. ОСТРА  ОРАЛНА  ТОКСИЧНОСТ  — ПРОЦЕДУРА  С 
ФИКСИРАНИ  ДОЗИ  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изпитване  е еквивалентен  на ОИСР  ТG 420 
(2001).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
При традиционните  методи  за оценяване  на остра  токсичност  
като краен  резултат  се достига  до смърт  на използваните  
животни . През  1984 г. бе предложен  нов подход  за тестване  
на остра  токсичност  от Британското  токсикологично  дружество , 
основаващ  се на определяне  на поредица  от нива  с фиксирани  
дози  (1). При този подход  се избягва  смъртта  на животните  в 
края  на експериментите  и се разчита  изпяло  на наблюдението  за 
ясни  признаци  за токсичност  във всяка  поредица  от нива  с 
фиксирани  дози . След  направените  в Обединеното  кралство  (2) 
и международните  (3) изследвания  in vivo  за утвърждаване  
процедурата  бе одобрена  като метод  за изпитване  през 1992 г. 
Впоследствие  статистическите  възможности  на процедурата  с 
фиксирани  дози  са оценени  чрез използването  на математически  
модели  в поредица  от изследвания  (4) (5) (6). Едновременно , 
изследванията  in vivo  и тези чрез създаване  на модели  
показват , че процедурата  е репродуктивна , използва  по-малко  
животни  и причинява  по-малко  страдание  от традиционните  
методи  и дава възможност  да се категоризират  веществата  по 
начин , подобен  на този при другите  методи  за изпитване  на 
остра  токсичност . 
Насоки  за избор  на най-подходящия  метод  за изследване  с 
определена  цел могат  да бъдат  намерени  в Ръководството  за 
провеждане  на изследвания  на остра  орална  токсичност  (7). 
Това  ръководство  също  съдържа  допълнителна  информация  за 
провеждането  и интерпретирането  на метода  за изследване  Б.1А. 
В този метод  по принцип  се използват  само  дози  с умерена  
токсичност  и следва  да се избягва  прилагането  на дози , за 
които  се очаква  да са летални . Така  също  дози , за които  е 
известно , че могат  да причинят  болка  и страдание  поради  
корозивни  или силно  дразнещи  въздействия , не следва  да 
бъдат  прилагани . Умиращите  животни  или животните , 
очевидно  изпитващи  болка  или показващи  признаци  на 
дълбоко  и продължително  страдание , се убиват  по хуманен  
начин  и се вземат  предвид  при интерпретирането  на резултатите  
по същия  начин , както  животните , умрели  по време  на 
експеримента . Критериите  за вземане  на решение  да бъде  
убито  умиращо  или дълбоко  страдащо  животно  и насоките  за 
разпознаване  на предвидима  или предстояща  смърт  са предмет  
на отделно  ръководство  (8). 
Методът  осигурява  информация  за опасните  свойства  и 
позволява  веществото  да бъде  категоризирано  и класифицирано  
съгласно  Глобалната  система  за хармонизиране  (GHS) на клас­  
ификацията  на химични  вещества , които  причиняват  остра  токс­  
ичност  (9). 
Лабораториите  за изпитване  следва  да вземат  предвид  цялата  
налична  информация  за изпитваното  вещество  преди  
провеждане  на експеримента . Такава  информация  включва  
идентичността  и химичната  структура  на веществото ; неговите  
физикохимични  свойства ; резултатите  от всякакви  други  in vitro  
или in vivo  токсикологични  изпитвания  на веществото ; токсик­  
ологичните  данни  за структурно  близки  вещества  и очаква­  
ната(ите) употреба (и) на веществото . Тази  информация  е необ­  
ходима , за да се удостовери  напълно , че това изпитване  е 
свързано  със защитата  на човешкото  здраве  и ще бъде  от 
полза  при избора  на подходяща  начална  доза. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 182
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Остра  орална  токсичност : отнася  се до онези  вредни  ефекти , 
които  се появяват  в резултат  на орален  прием  на еднократна  
доза вещество  или многократни  дози , давани  в рамките  на 24 
часа. 
Бавна  смърт  означава , че животното  не умира  или не се 
проявяват  признаци , че умира  в рамките  на 48 часа, но умира  
по-късно  през 14-дневния  период  на наблюдение . 
Доза  е количеството  на приетото  вещество  за тестване . Дозата  
се изразява  като маса  на тестваното  вещество  за единица  тегло  
на изследваното  животно  (напр . mg/kg).  
Доказана  токсичност  е общоприет  термин , описващ  ясните  
признаци  на токсичност  вследствие  на приемане  на изпитваното  
вещество  (вж. (3) например ), такива  че при приемане  на 
следваща  най-висока  фиксирана  доза могат  да бъдат  очаквани  
всякакви  признаци  на дълбока  болка  и продължителни  дълбоки  
страдания , терминално  състояние  (критериите  са представени  в 
Ръководството  за хуманен  край  (8) или вероятна  смърт  на 
повечето  животни . 
GHS : Глобална  система  за хармонизиране  на класификацията  на 
химични  вещества  и смеси . Съвместна  дейност  на ОИСР  
(човешко  здраве  и околна  среда ), Комитета  на ООН  от 
експерти  в областта  на транспортирането  на опасни  стоки  (физ­  
икохимични  свойства ) и МОТ  (опасни  комуникации ) и 
координирана  чрез Междуорганизационната  програма  за 
правилно  управление  на химикалите  (IОМС ). 
Неизбежна  смърт : когато  животното  умира  или се очаква  
настъпването  на смъртта  преди  следващото  планирано  време  
за наблюдение . Признаците , които  показват  това състояние  
при гризачите , могат  да включват  конвулсии , латерално  
положение , отпуснатост  и треперене . (Вж. Ръководството  за 
хуманен  край  (8) за повече  подробности .) 
LD 50 (средна  летална  доза ) е статистически  получена  
еднократна  доза на вещество , за което  може  да се очаква , че 
ще причини  смърт  при 50 % от животните , когато  бъде  
въведено  в тях по орален  път. Стойността  LD  50 се изразява  за 
определени  периоди  като масата  на изпитваното  вещество  за 
единица  тегло  на изследваното  животно  (mg/kg).  
Ограничена  доза : отнася  се до доза, при която  има по-високо  
ограничаване  при изследването  (2 000 или 5 000 mg/kg).  
Настъпване  на смърт : оставане  в терминално  състояние  или 
неспособност  да оцелее , дори  ако се приложи  лечение . (Вж. 
Ръководството  за хуманен  край  (8) за повече  подробности .) 
Предсказуема  смърт : присъствие  на клинични  признаци , които  
показват , че ще настъпи  смърт  в един  предстоящ  период  от 
време  преди  планирания  край  на експеримента , например : 
неспособност  да се достигне  вода  или храна . (Вж. Ръково­  
дството  за хуманен  край  (8) за повече  подробности .) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 183
 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Групи  животни  от един  и същ пол са дозирани  чрез прилагане  
на поетапна  процедура  чрез използване  на фиксирани  дози  от 5, 
50, 300 и 2 000 mg/kg ( по изключение  може  да бъде  приложена  
допълнителна  фиксирана  доза от 5 000 mg/kg, вижте  точка  
1.6.2). Нивото  на началната  доза е определено  въз основа  на 
зрителни  изследвания , като се очаква  дозата  да предизвика  
някои  признаци  на токсичност , без да причинява  дълбоки  
токсични  ефекти  или смърт . Клиничните  признаци  и условията , 
свързани  с болка , страдание  и неизбежна  смърт , са подробно  
описани  в отделно  ръководство  на ОИСР  (8). Следващи  групи  
животни  могат  да бъдат  дозирани  с по-високи  или по-ниски  
фиксирани  дози  в зависимост  от присъствието  или отсъствието  
на признаци  за отравяне  или смърт . Тази  процедура  продължава  
до достигане  на дозата , причиняваща  доказана  токсичност , или 
дотогава , докато  бъде  идентифицирана  смъртта  на животното  
или не се наблюдават  ефекти  при най-високата  доза, или 
когато  се появят  смъртни  случаи  при най-ниската  доза. 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.4.1.  Избор  на животински  видове  
Предпочитаният  вид от групата  на гризачите  е плъх , въпреки  че 
могат  да бъдат  използвани  и други  видове  гризачи . Обикновено  
се използват  животни  от женски  пол (7). Причината  за това е, че 
изследванията  в научната  литература  от конвенционални  
изпитвания  на LD50 показват , че обикновено  има малка  
разлика  в междуполовата  сетивност , но в случаите , при които  
се наблюдават  различия , женските  индивиди  като цяло  са малко  
по-чувствителни  (10). Въпреки  това, ако познанията  за токсик­  
ологичните  и токсикокинетичните  свойства  на структурно  
близки  химикали  показват , че има вероятност  мъжките  
индивиди  да са по-чувствителни  от женските , тогава  се 
използват  екземпляри  от този пол. Когато  изпитването  се 
провежда  върху  мъжки  индивиди , трябва  да бъде  предоставено  
адекватно  обяснение  за това. 
Обикновено  в лабораторните  опитни  постановки  следва  да се 
използват  здрави  млади  полово  зрели  животни . Женските  
индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . Всяко  
животно , при започване  на дозирането  му, следва  да бъде  на 
възраст  между  8 и 12 седмици  и теглото  му да попада  в 
интервала  ± 20 % от средното  тегло  на всички  предварително  
дозирани  животни . 
1.4.2.  Условия  за отглеждане  и хранене  
Температурата  в стаята  на опитните  животни  следва  да бъде  
22 o С (± 3  o С). Въпреки  че относителната  влажност  следва  да 
бъде  поне  30 % и е препоръчително  тя да не надвишава  70 %, 
освен  при почистване  на стаята , целта  е да се постигне  
50—60 % относителна  влажност . Светлината  следва  да бъде  
изкуствена , с редуващи  се 12 часа светъл  период , 12 часа 
тъмен  период . За хранене  могат  да бъдат  използвани  конве­  
нционалните  лабораторни  диети  с неограничен  достъп  до 
питейна  вода . Животните  могат  да бъдат  групирани  в клетките  
по доза, но броят  на животните  в клетка  не трябва  да възпреп­  
ятства  точните  наблюдения  на всяко  животно . 
1.4.3.  Подготовка  на животните  
Животните  са произволно  избрани , маркирани , за да е възможно  
индивидуалното  им идентифициране , и поставени  в клетките  си 
поне  5 дни преди  започване  на дозирането , за да се аклим­  
атизират  към лабораторните  условия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 184
 
1.4.4.  Подготовка  на дозите  
Най-общо  изпитваните  вещества  трябва  да бъдат  приемани  в 
постоянен  обем  в обхвата  на дозите , които  се изпитват  чрез 
вариране  в концентрацията  на дозирания  препарат . Когато  
крайният  продукт , който  трябва  да бъде  изпитван , е под 
формата  на течност  или смес  обаче , за последващата  оценка  
на риска  от това вещество  може  да бъде  по-подходящо  
изпитваното  вещество  да се употребява  неразредено , т.е. при 
постоянна  концентрация , което  е и изискване  от страна  
на някои  регулаторни  органи . Във всеки  случай , обемът  на макс­  
ималната  доза за администриране  не трябва  да бъде  завишаван . 
Максималният  обем  на течността , която  може  да бъде  приета  
наведнъж , зависи  от размера  на изследваното  животно . 
При гризачи  обикновено  обемът  не надвишава  1 ml/100 g 
телесно  тегло : обаче  в случай  на водни  разтвори  може  да се 
приемат  2 ml/100 g телесно  тегло . Във връзка  с изготвянето  на 
дозирани  препарати  се препоръчва , където  е възможно , да се 
използва  воден  разтвор /суспензия /емулсия , следван  първо  от 
разтвор /суспензия /емулсия  в масло  (напр . царевично  масло ) и 
след  това по възможност  от разтвор  при други  разтворители . 
Трябва  да се знаят  токсикологичните  характеристики  на разт­  
ворителите , с изключение  на водата . Дозите  не трябва  да 
бъдат  приготвяни  дълго  време  преди  приемането  им, освен  
когато  е известно  и доказано , че препаратът  ще остане  
стабилен  и в добро  състояние  през времето , в което  ще бъде  
използван . 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1.  Приемане  на дозите  
Изпитваното  вещество  се приема  на еднократни  дози , чрез 
изкуствено  хранене , в стомашния  тръбопровод  или чрез 
подходяща  интубационна  канюла . При извънредни  обстоят­  
елства , при които  приемането  на еднократна  доза не е 
възможно , дозата  може  да бъде  давана  на по-малки  части  през 
период , който  не може  да превишава  24 часа. 
Преди  дозирането  животните  следва  да бъдат  поставени  на 
ограничен  режим  на хранене  за известно  време  (напр . на 
плъховете  не следва  да се дава храна , а само  вода  през нощта  
преди  експеримента ; на мишките  в продължение  на 3—4 часа не 
следва  да се дава храна , а само  вода ). След  периода  на „постене “ 
животните  трябва  да бъдат  претеглени  и изпитваното  вещество  – 
приложено . След  като веществото  бъде  прието , може  да не се 
дава храна  в следващите  3—4 часа при плъховете  или 1—2 часа 
при мишките . Когато  дозата  се приема  на части , в определен  
период  от време  може  да се наложи  да се осигури  храна  и вода  
на животните  в зависимост  от продължителността  на периода . 
1.5.2.  Зрително  изследване  
Целта  на зрителното  изследване  е да подпомогне  избора  на 
подходящата  начална  доза за основното  изследване . 
Изпитваното  вещество  се приема  от отделните  животни  после­  
дователно  по начина , показан  на графичните  алгоритми  в 
приложение  1. Зрителното  изследване  приключва , когато  може  
да бъде  взето  решение  за първоначалната  доза в основното  
изследване  (или ако смъртта  е настъпила  при най-ниската  
фиксирана  доза). 
Началната  доза за зрителното  изследване  се избира  от нивата  на 
фиксираната  доза: 5, 50, 300 и 2 000 mg/kg. Като  основа  се взема  
дозата , при която  се очаква  проява  на доказана  токсичност , 
когато  е възможно , на база доказателство  от in vivo  и in vitro  
данни  за същия  химикал  или за структурно  близки  химикали . 
При липсата  на такава  информация  началната  доза е 300 mg/kg.  
Следва  да има поне  24-часов  период  между  дозирането  на всяко  
животно . Всички  животни  следва  да бъдат  наблюдавани  поне  14 
дни. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 185
 
По изключение  и само  когато  е оправдано  от определени  регул­  
аторни  нужди , може  да бъде  приложена  допълнителна  
фиксирана  доза с по-високо  ниво  5 000 mg/kg ( вж. 
приложение  3). По причини , свързани  с хуманното  отношение  
към животните , изследването  на животни  в категория  5 на GHS 
в обхвата  2 000—5 000 mg/kg е нежелателно  и следва  да се има 
предвид  само  когато  съществува  голяма  вероятност  резултатите  
от такова  изследване  да имат  практическо  значение  за опазване  
здравето  на хората  или животните , или за околната  среда . 
В случаите , когато  животното , изследвано  при най-ниското  ниво  
с фиксирана  доза (5 mg/kg) при провеждане  на зрителното  
изследване , умре , при нормалната  процедура  изследването  
приключва  и веществото  се отнася  към категория  1 на GHS 
(както  е показано  в приложение  1). Обаче , ако се изисква  
последващо  потвърждаване  на класифицирането , може  да се 
предвиди  евентуална  допълнителна  процедура , както  следва . 
Второ  животно  се дозира  с 5 mg/kg. Ако и второто  животно  
умре , тогава  категория  1 в GHS се потвърждава  и изследването  
незабавно  се прекратява . Ако второто  животно  оцелее , тогава  
максимум  три допълнителни  животни  биват  дозирани  с по 
5 mg/kg. Тъй като ще съществува  висок  риск  от смъртност , 
тези животни  следва  да бъдат  дозирани  по начин , целящ  
опазване  на хуманното  отношение  към животните . Времевият  
интервал  между  дозирането  на всяко  животно  следва  да бъде  
достатъчен , за да се установи , че предишното  животно  
вероятно  ще оцелее . Ако се установи  втора  смърт , дозирането  
следва  да бъде  незабавно  преустановено  и следващите  животни  
не се дозират . Заради  появата  на втори  смъртен  случай  
(независимо  от броя  на изследваните  животни  в периода  на 
приключването ), попадащ  в резултат  А (два или повече  
смъртни  случаи ), следва  правилото  за класифициране  на 
приложение  2 при 5 mg/kg фиксирана  доза (категория  1, ако 
има два или повече  смъртни  случаи  или категория  2, ако няма  
повече  от 1 смъртен  случай ). Освен  това приложение  4 дава 
насоки  за класифициране  по системата  на ЕС, докато  бъде  
въведена  новата  система  GHS.  
1.5.3.  Основно  изпитване  
1.5.3.1.  Брой  животни  и нива  на дозиране  
След  изпитване  с началното  ниво  на дозиране  действието , което  
трябва  да се извърши , е показано  чрез графичния  алгоритъм  в 
приложение  2. Изисква  изпълнението  на едно  от следните  
действия : да се прекрати  всяко  изпитване  и да се определи , 
след  класифициране , подходящият  клас на опасност ; да се 
проведе  изпитване  при по-висока  фиксирана  доза или 
изпитване  при по-ниска  фиксирана  доза. Въпреки  това, за 
защита  на животните , нивото  на дозата , причинила  смърт  при 
зрителното  изследване , не се повтаря  при основното  изследване  
(вж. приложение  2). Опитът  показва , че най-вероятният  резултат  
при нивото  на началната  доза е, че веществото  може  да бъде  
класифицирано  и не е необходимо  по-нататъшно  изследване . 
Обикновено  се използват  общо  пет животни  от един  и същ пол 
при всяко  изследвано  ниво  на дозата . Едно  от петте  животни , 
което  е било  използвано  при зрителното  изследване , се дозира  
заедно  с четирите  останали  животни  (освен , по изключение , ако 
използваното  ниво  на дозата  при основното  изследване  не е 
било  включено  в зрителното  изследване ). 
Интервалът  от време  между  дозирането  на всяко  ниво  се 
определя  от началото , продължителността  и остротата  на токс­  
ичните  признаци . Третирането  на животните  със следваща  доза 
следва  да бъде  забавено , докато  се докаже , че животните , 
приели  определената  доза по-рано , ще оцелеят . Препоръчва  се 
да има период  от 3 или 4 дни между  дозирането  на всяко  ниво , 
ако е нужно , за да има възможност  за наблюдения  върху  
забавената  токсичност . При необходимост  времевият  интервал  
може  да бъде  регулиран , напр . в случай  на незавършен  отговор . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 186
 
Когато  се обмисля  прилагането  на по-високата  фиксирана  доза 
5 000 mg/kg, се следва  процедурата , представена  в приложение  3 
(вж. също  точка  1.6.2).  
1.5.3.2.  Ограничено  изпитване  
Ограниченото  изпитване  се използва  предимно  в случаите , при 
които  експериментаторът  разполага  с информация , съгласно  
която  изпитваният  материал  по всяка  вероятност  не е 
токсичен , т.е. проявява  токсичност  само  над нормативно  
ограничените  дози . Информация  за токсичността  на изпитвания  
материал  може  да бъде  събрана  от познания  за подобни  тествани  
съединения  или подобни  тествани  смеси  или продукти , като се 
вземат  предвид  идентичността  и процентното  съдържание  на 
съединенията , за които  е известно , че са токсикологически  
значими . В случаите , когато  има малко  или няма  информация  
за токсичността  на материала  или когато  се очаква  изпитваният  
материал  да бъде  токсичен , трябва  да бъде  проведено  основното  
изследване . 
Прилага  се нормалната  процедура , като началната  доза при 
зрително  изследване  е 2 000 mg/kg ( или по изключение  5 000 
mg/kg), последвана  от дозиране  на допълнителни  четири  
животни  на това ниво  на ограниченото  изпитване  по това ръко­  
водство . 
1.6. НАБЛЮДЕНИЯ  
Животните  се наблюдават  индивидуално  след  поне  еднократно  
дозиране  през първите  30 минути , периодично  през първите  24 
часа, с повишено  внимание  през първите  4 часа и ежедневно  
след  това, през общо  14-дневен  период  от време , освен  когато  
е необходимо  да бъдат  извадени  от експеримента  и убити  по 
хуманен  начин  по причини , свързани  с хуманното  отношение  
към животните , или когато  са намерени  мъртви . Продължит­  
елността  на наблюдението  обаче  не следва  да бъде  строго  
фиксирана . Тя следва  да се определя  въз основа  на токсичните  
реакции , началното  време  и продължителността  на периода  за 
възстановяване  и може  да бъде  увеличена , когато  се сметне  за 
необходимо . Периодите  от време , в които  се появяват  и изчезват  
признаците  на токсичност , са важни , особено  ако има тенденция  
токсичните  признаци  да бъдат  забавени  (11). Всички  набл­  
юдения  систематично  се записват , с отделни  записи , направени  
за всяко  животно . 
Допълнителни  изследвания  са необходими , ако животните  
продължат  да показват  признаци  на токсичност . Наблюденията  
следва  да включват  промените  в кожата  и козината , очите  и 
лигавиците , и също  респираторната , циркулационната , авто­  
номната  и централната  нервна  система , соматомоторна  
активност  и моделите  на поведение . Следва  да бъде  обърнато  
внимание  на наблюденията  за треперене , конвулсии , слюноотд­  
еляне , диария , летаргия , сън и кома . Следва  да бъдат  взети  
предвид  принципите  и критериите , резюмирани  в Ръководството  
за хуманен  край  (8). Животните , намерени  в терминално  
състояние , и животните , показващи  дълбока  болка  или трайни  
признаци  на дълбоко  страдание , следва  да бъдат  хуманно  убити . 
Когато  животните  са убити  по хуманни  причини  или са 
намерени  мъртви , следва  да бъде  записано  времето  на смъртта  
им, колкото  е възможни  по-точно . 
1.6.1.  Телесно  тегло  
Индивидуалното  тегло  на животните  следва  да бъде  измервано  в 
кратък  интервал  от време  преди  приемането  на изпитваното  
вещество  и поне  веднъж  седмично  след  това. Промените  в 
теглото  следва  да бъдат  изчислявани  и записвани . В края  на 
експеримента  оцелелите  животни  се претеглят  и след  това 
хуманно  се убиват . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 187
 
1.6.2.  Патология  
Всички  изследвани  животни  (включително  умрелите  по време  на 
експеримента  или извадените  от експеримента  животни  по 
причини , свързани  с хуманното  отношение  към животните ) 
следва  да бъдат  подложени  на цялостна  аутопсия . Всички  
цялостни  патологични  изменения  във всяко  животно  следва  да 
бъдат  записани . Микроскопските  изследвания  на органите  
показват  доказателствата  за цялостна  патология  при животните , 
оцелели  24 часа или повече  след  първоначалното  дозиране , и 
също  могат  да допринесат  за получаването  на полезна  
информация . 
2. ДАННИ  
Следва  да бъдат  осигурени  индивидуални  данни  за всяко  
животно . Освен  това всички  данни  следва  да бъдат  обобщени  
в таблична  форма , показваща  броя  на използваните  животни  във 
всяка  от изследваните  групи , броя  на животните , проявяващи  
признаци  за токсичност , броя  на животните , намерени  мъртви  
по време  на изследването  или убити  по хуманни  причини , 
времето  на настъпване  на смъртта  на животинския  индивид , 
описание  и развитие  във времето  на токсичните  ефекти  и обрат­  
имостта  им, както  и заключенията  от аутопсията . 
3. ОТЧИТАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  по целесъобразност  трябва  да 
включва  следната  информация : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  форма , чистота  и, където  е подходящо , физикох­  
имични  свойства  (включително  изомеризация ); 
— данни  за идентичността , включително  САS номер . 
Разтворител  (ако има такъв ): 
— обосноваване  на избора  на разтворител , ако е различен  от 
вода . 
Изследвани  животни : 
— използвани  видове /породи ; 
— микробиологично  състояние  на животните , когато  е 
известно ; 
— брой , възраст  и пол на животните  (включително , при необ­  
ходимост , обосноваване  използването  на мъжки  индивиди  
вместо  женски ); 
— водоизточник , условия  за отглеждане , диета  и т.н. 
Условия  на експеримента : 
— подробности  за формулирането  на изпитваното  вещество , 
включително  подробности  за физичното  състояние  на 
приемания  материал ; 
— подробности , свързани  с приемането  на изпитваното  
вещество , обеми  на дозите  и време  на дозиране ; 
— подробности  във връзка  с качеството  на храната  и водата  
(включително  вид/източник  на диетата , водоизточник ); 
— обосновка  на избора  на началната  доза. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 188
 
Резултати : 
— таблици /диаграми  на получените  данни  и ниво  на дозата  за 
всяко  животно  (т.е. при които  животното  показва  признаци  
на токсичност , включително  смърт , природа , острота  и 
продължителност  на ефектите ); 
— таблици /диаграми  на телесното  тегло  и на измененията  в 
него ; 
— индивидуални  тегла  на животните  в деня  на дозиране , през 
седмични  интервали  след  това и по време  на смърт  или 
убиване ; 
— дата и време  на смъртта , ако умрат  преди  програмираното  
унищожаване ; 
— развитие  във времето  от първоначалното  появяване  на 
признаци  за токсичност  и дали  са били  обратими  при 
всяко  животно ; 
— заключения  при аутопсията  и хистопатологични  заключения  
за всяко  животно , ако има такива . 
Дискусия  и интерпретиране  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) British Toxicology Society Working Party on Toxicity (1984). 
Special report: a new approach to the classification of subs ­
tances and preparations on the basis of their acute toxicity. Human Toxicol., 3, 85—92.
 
(2) Van den Heuvel, M. J., Dayan, A. D. and Shillaker, R. O. 
(1987). Evaluation of the BTS approach to the testing of subs ­
tances and preparations for their acute toxicity. Human Toxicol., 6, 279—291.
 
(3) Van den Heuvel, M. J., Clark, D. G., Fielder, R. J., Koun ­
dakjian, P. P., Oliver, G. J. A., Pelling, D., Tomlinson, N. J. and Walker, A. P. (1990). The international validation of a 
fixed-dose procedure as an alternative to the classical LD
 50 
test. Fd. Chem. Toxicol. 28, 469—482.  
(4) Whitehead, A. and Curnow, R. N. (1992). Statistical evaluation 
of the fixed-dose procedure. Fd. Chem. Toxicol., 30, 
313—324.  
(5) Stallard, N. and Whitehead, A. (1995). Reducing numbers in 
the fixed-dose procedure. Human Exptl. Toxicol. 14, 
315—323. Human Exptl. Toxicol.  
(6) Stallard, N., Whitehead, A. and Ridgeway, P. (2002). 
Statistical evaluation of the revised fixed dose procedure. 
Hum. Exp. Toxicol., 21, 183—196.  
(7) OECD (2001). Guidance Document on Acute Oral Toxicity 
Testing. Environmental Health and Safety Monograph Series 
on Testing and Assessment N. 24. Paris  
(8) OECD (2000). Guidance Document on the Recognition, 
Assessment and Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation. Environ ­
mental Health and Safety Monograph Series on Testing and 
Assesment N. 19.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 189
 
(9) OECD (1998). Harmonised Integrated Hazard Classification 
for Human Health and Environmental Effects of Chemical 
Substances as endorsed by the 28th Joint Meeting of the Chemicals Committee and the Working Party on Chemicals in November 1998, Part 2, p. 11 [http://webnetl.oecd.org/ 
oecd/pages/home/displaygeneral/0,3380,EN-documents-521-14- 
№-24-№-0,FF.html].
 
(10) Lipnick, R. L., Cotruvo, J. A., Hill, R. N., Bruce, R. D., 
Stitzel, K. A., Walker, A. P., Chu, I., Goddard, M., Segal, 
L., Springer, J. A. and Myers, R. C. (1995). Comparison of 
the Up-and-Down, Conventional LD  50 , and Fixed-Dose Acute 
Toxicity Procedures. Fd. Chem. Toxicol. 33, 223—231.  
(11) Chan P. K and A. W. Hayes (1994) Chapter 16 Acute Toxicity 
and Eye Irritation. In: Principles and Methods of Toxicology. 
3 rd Edition. A. W. Hayes, Editor. Raven Press, Ltd. New York, USA.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 190
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 191
 ▼B 
ПРИЛОЖЕНИЕ  1 
ГРАФИЧЕН  АЛГОРИТЪМ  ЗА ЗРИТЕЛНОТО  ИЗСЛЕДВАНЕ

 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 192
 ▼B

 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 193
 ▼B 
ПРИЛОЖЕНИЕ  2: 
ГРАФИЧЕН  АЛГОРИТЪМ  ЗА ОСНОВНОТО  ИЗСЛЕДВАНЕ

 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 194
 ▼B

 
ПРИЛОЖЕНИЕ  3 
КРИТЕРИИ  ЗА КЛАСИФИЦИРАНЕ  НА ИЗПИТВАНО  ВЕЩЕСТВО  С 
ОЧАКВАНА  СТОЙНОСТ  НА LD  50 НАД  2 000 MG/KG БЕЗ 
НЕОБХОДИМОСТОТ  ИЗПИТВАНЕ  
Критериите  за опасност  в категория  5 се предназначени  да подпомогнат  
идентифицирането  на изпитваните  вещества , които  са с относително  
ниска  опасност  от остра  токсичност , но които  при определени  обстоят­  
елства  могат  да представляват  опасност  за уязвимите  поколения . Тези  
вещества  се очаква  да имат  орална  или дермална  LD  50 в обхвата  
2 000—5 000 mg/kg или еквивалентни  дози  при други  начини  на 
приемане . Изпитваните  вещества  могат  да бъдат  класифицирани  в 
категория  на опасност , определена  чрез: 2 000 mg/kg < LD  50 < 5 000 
mg/kg (категория  5 в GHS) в следните  случаи : 
а) ако са стигнали  до тази категория  по някоя  от схемите  за изследване  от 
приложение  2, основани  на смъртни  инциденти ; 
б) ако вече съществува  достоверно  доказателство , което  показва , че LD  50 е 
в обхвата  от стойности  на категория  5, или други  изследвания  върху  
животни , или токсикологични  изследвания  върху  хора  дават  основания  
за сериозно  безпокойство  относно  човешкото  здраве ; 
в) чрез данни  от екстраполация , оценяване  или измерване , ако няма  
основание  да се отнесе  към по-висок  клас на опасност , и 
— има налична  достоверна  информация , показваща  значителни  токсик­  
ологични  ефекти  при хората , или 
— наблюдава  се смъртност  при изпитване  с високи  стойности  като тези 
в категория  4 чрез орален  път на приемане , или 
— когато  експертната  оценка  потвърди  съществените  клинични  
признаци  на токсичност  при изпитване  с високи  стойности  като 
тези в категория  4, освен  при диария , пилоерекция  или недобър  
външен  вид, или 
— когато  експертната  оценка  потвърди  достоверната  информация , която  
индикира  потенциална  възможност  за значими  остри  ефекти  от други  
изпитвания  върху  животни . 
ИЗСЛЕДВАНЕ  С ДОЗИ  НАД  2 000 MG/KG  
По изключение  и само  когато  е оправдано  от определена  необходимост  за 
регулиране , може  да се проведе  изследване  с използване  на допълнителна  
по-висока  фиксирана  доза с ниво  5 000 mg/kg. Приемайки  необходимостта  
от хуманно  отношение  към животните , не се препоръчва  изследване  с 5 000 
mg/kg и следва  да бъде  взето  предвид  само , когато  има голяма  вероятност  
резултатите  от такова  изследване  да имат  пряко  практическо  значение  за 
опазване  здравето  на хората  или животните  (9). 
Зрително  изследване  
Правилата  за вземане  на решение , които  са указани  в следващата  
процедура , представена  в приложение  1, включват  доза с ниво  5 000 
mg/kg. По този начин , когато  при зрително  изследване  се използва  
начална  доза 5 000 mg/kg и резултатът  е А (смърт ), се налага  второто  
животно  да бъде  изследвано  с 2 000 mg/kg; резултати  В и С (доказана  
токсичност  или нетоксичност ) позволяват  като начална  доза за основното  
изследване  да бъде  избрана  5 000 mg/kg. По подобен  начин , ако се използва  
начална  доза, различна  от 5 000 mg/kg, тогава  изпитването  ще доведе  до 
прилагане  на 5 000 mg/kg в случай  на резултат  В или С при 2 000 mg/kg; 
резултат  А след  прилагането  на 5 000 mg/kg налага  началната  доза за 
основното  изследване  да бъде  2 000 mg/kg, a резултати  В и С налагат  
началната  доза за основното  изследване  да бъде  5 000 mg/kg.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 195
 
Основно  изследване  
Правилата  за вземане  на решение , които  са указани  в следващата  
процедура , представена  в приложение  2, включват  доза с ниво  5 000 
mg/kg. По този начин , когато  при основно  изследване  се използва  
начална  доза 5 000 mg/kg, резултат  А (> 2 смъртни  случая ) налага  
изследване  на втора  група  при 2 000 mg/kg; резултат  В (доказана  токс­  
ичност  и/или < 1 смъртен  случай ) или С (нетоксичност ) води  до резултат  
веществото  да не бъде  класифицирано  съгласно  GHS. По подобен  начин , 
ако се използва  начална  доза, различна  от 5 000 mg/kg, тогава  изпитването  
води  до прилагане  на 5 000 mg/kg в случай  на резултат  С при 2 000 mg/kg; 
резултат  А след  прилагането  на 5 000 mg/kg води  до това веществото  да 
бъде  определено  в категория  5 на GHS, а резултат  В или С води  до това 
веществото  да не бъде  класифицирано . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 196
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 197
 ▼B 
ПРИЛОЖЕНИЕ  4 
МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  Б.1А 
Ръководство  за класифициране  съгласно  схемата  на ЕС за обхващане  на преходния  период  до пълното  прилагане  на Глобалната  система  за хармонизиране  на класификацията  
(GНS) (взето  от препратка  8)

 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 198
 ▼B

 
Б.1Б. ОСТРА  ОРАЛНА  ТОКСИЧНОСТ  — МЕТОД  КЛАС  ОСТРА  
ТОКСИЧНОСТ  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изпитване  е еквивалентен  на ОИСР  ТG 423 (2001)  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Методът  при клас остра  токсичност  (1), представен  с това 
изследване , е поетапна  процедура , при която  се използват  по 3 
животни  от един  и същ пол на всеки  етап. В зависимост  от 
смъртността  и/или състоянието  на предстояща  смърт  при 
животните  може  да се наложи  средно  на 2—4 стъпки  да бъде  
взето  решение  относно  острата  токсичност  на изпитваното  
вещество . Тази  процедура  е репродуктивна , използва  много  
малко  животни  и дава възможност  за категоризиране  на 
веществата  по начин , подобен  на този при други  методи  за 
изпитване  за остра  токсичност . Методът  при клас остра  токс­  
ичност  се основава  на биометрични  оценки  (2)(3)(4)(5) с 
фиксирани  дози , подходящо  отделени , за да може  едно  
вещество  да бъде  категоризирано  за целите  на класифицирането  
и оценката  на риска . Методът , който  е одобрен  през 1996 г., е 
широко  утвърден  in vivo  спрямо  LD  50 данните , получени  от 
публикуваните  национални  (6) и международни  (7) изследвания . 
Насоките  за избор  на най-подходящият  метод  за изпитване  с 
определена  цел се намират  в Ръководството  за изпитване  на 
острата  орална  токсичност  (8). Това  ръководство  съдържа  
също  допълнителна  информация  за провеждането  и 
интерпретирането  на метода  за тестване  Б.1б. 
Изпитваните  вещества , в дози , за които  е известно , че могат  да 
причинят  болка  и страдание  поради  корозивно  или силно  
дразнещо  действие , не следва  да бъдат  прилагани . Умиращи  
животни  или животни , очевидно  изпитващи  болка  или 
показващи  признаци  на дълбоко  и продължително  страдание , 
биват  хуманно  убивани  и също  се вземат  предвид  при 
интерпретирането  на резултатите , по същия  начин  както  
животните , умрели  по време  на експеримента . Критериите  за 
вземане  на решение  да бъде  убито  умиращо  или дълбоко  
страдащо  животно  и насоки  за разпознаване  на предсказуема  
или предстояща  смърт  са обект  на отделно  ръководство  (9). 
При този метод  се използват  предварително  определени  дози  и 
резултатите  позволяват  веществото  да бъде  категоризирано  и 
класифицирано  съгласно  Глобалната  система  (GНS) за 
хармонизиране  на класификацията  на химични  вещества , които  
причиняват  остра  токсичност  (10).  
По принцип  методът  цели  изчисляването  на точната  LD  50 , но 
позволява  установяването  на определени  области  на експозиция , 
в които  се очаква  леталност , доколкото  смъртност  като 
пропорционално  съотношение  при животните  се достига  едва 
в самия  край  на това изследване . Методът  позволява  определяне  
стойността  на LD  50 само  когато  в резултат  от прилагането  на 
най-малко  две дози  се постига  ръст  на смъртността , по-висок  от 
0 % и по-нисък  от 100 %. Използването  на избрани  
предварително  определени  дози , независимо  от изпитваното  
вещество , с класифициране , което  е категорично  свързано  с 
броя  на наблюдаваните  животни  в различните  етапи , 
подобрява  възможността  за последователно  и многократно  
докладване  на резултатите  между  отделните  лаборатории . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 199
 
В лабораторията  за изследване  следва  да се вземе  предвид  
цялата  налична  информация  за изследваното  вещество  преди  
провеждане  на експеримента . Такава  информация  включва  
идентичност  и химична  структура  на веществото ; неговите  
физикохимични  свойства ; резултатите  от всякакви  други  in 
vivo или in vitro  токсикологични  изпитвания  на веществото ; 
токсикологични  данни  за структурно  близки  вещества  и 
очаквана (и) употреба (и) на веществото . Тази  информация  е 
необходима , за да се удостовери  напълно , че това изпитване  е 
свързано  със защитата  на човешкото  здраве  и ще бъде  от полза  
при избора  на най-подходящата  начална  доза. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Остра  орална  токсичност : отнася  се до онези  вредни  ефекти , 
които  се появяват  в резултат  на орален  прием  на еднократна  
доза вещество  или многократни  дози , давани  в рамките  на 24 
часа. 
Бавна  смърт : означава  животното  да не умира  или да не се 
проявят  признаци  на смърт  в рамките  на 48 часа, но да умре  
по-късно , през 14-дневния  период  на наблюдения . 
Доза : е количеството  прието  изпитвано  вещество . Дозата  се 
изразява  като маса  на изпитваното  вещество  за единица  тегло  
на изследваното  животно  (напр . mg/kg).  
GНS: Глобална  система  за хармонизиране  на класификацията  на 
химични  вещества  и смеси . Съвместна  дейност  на ОИСР  
(човешко  здраве  и околна  среда ), Комитета  на ООН  от 
експерти  в областта  на транспортирането  на опасни  стоки  (физ­  
икохимични  свойства ) и МОТ  (опасни  комуникации ) и 
координирана  чрез Междуорганизационната  програма  за 
правилно  управление  на химикалите  (IОМС ). 
Неизбежна  смърт : когато  животното  умира  или се очаква  
настъпването  на смърт  преди  следващото  планирано  време  за 
наблюдение . Признаците , показващи  това състояние  при 
гризачи , могат  да включват  конвулсии , латерално  (странично ) 
положение , лежане  и треперене . (Вж. Ръководството  за 
хуманен  край  (9) за повече  подробности .) 
LD 50 (средна  летална  орална  доза ): е статистически  получена  
еднократна  доза на вещество , за която  може  да се очаква , че ще 
причини  смърт  при 50 % от животните , когато  бъде  въведена  в 
тях по орален  път. Стойността  LD  50 се изразява  за периоди  като 
масата  на изпитваното  вещество  за единица  тегло  на 
изследваното  животно  (mg/kg).  
Ограничена  доза : отнася  се до доза с по-голямо  ограничение  
при изследването  (2 000 или 5 000 mg/kg).  
Настъпване  на смърт : оставане  в терминално  състояние  или 
неспособност  да се оцелее , дори  ако се приложи  лечение . (Вж. 
Ръководството  за хуманен  край  (9) за повече  подробности .) 
Предсказуема  смърт : присъствие  на клинични  признаци , които  
показват , че е налице  смърт  в определен  предстоящ  период  от 
време  преди  планирания  край  на експеримента , например : 
неспособност  да се достигне  вода  или храна . (Вж. Ръково­  
дството  за хуманен  край  (9) за повече  подробности .) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 200
 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗСЛЕДВАНЕ  
Принцип  на метода  за изследване  е, че въз основа  на поетапна  
процедура , при която  се използват  минимален  брой  животни  на 
етап, се получава  допълнителна  информация  за острата  токс­  
ичност  на изследваното  вещество , която  дава възможност  за 
неговото  класифициране . Веществото  се приема  по орален  път 
на постъпване  от група  експериментални  животни  в една  от 
определените  дози . Веществото  се изпитва  чрез прилагане  на 
поетапна  процедура , като на всеки  етап се използват  по три 
животни  от един  и същ пол (обикновено  женски  индивиди ). 
Наличието  или отсъствието  на смъртни  случаи , свързани  с 
веществото  на един  етап, е определящо  за дозирането  на 
следващия  етап, т.е.: 
— не са необходими  допълнителни  изследвания ; 
— дозиране  на три допълнителни  животни  със същата  доза; 
— дозиране  на три допълнителни  животни  с по-високо  или по- 
ниско  ниво  на дозата . 
Подробностите  около  провеждането  на процедурата  за 
изпитване  са описани  в приложение  1. Методът  дава 
възможност  да се вземе  решение  относно  класифицирането  на 
изследваното  вещество  и да бъде  причислено  към един  от 
поредицата  токсикологични  класове  чрез определяне  на 
точните  стойности  на LD  50 . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.4.1.  Избор  на животински  видове  
Предпочитаният  вид от групата  на гризачите  е плъх , въпреки  че 
и други  видове  гризачи  могат  да бъдат  използвани . Обикновено  
се използват  животни  от женски  пол (9). Причина  за това е, че 
изследванията  в научната  литература  чрез конвенционални  
тестове  с LD  50 показват , че независимо  от малката  разлика  в 
междуполовата  сетивност  в случаите , при които  се наблюдават  
различия , женските  индивиди  като цяло  са малко  по-чувств­  
ителни  (11). Въпреки  това, ако познанията  за токсикологичните  
и токсикокинетичните  свойства  на близки  по структура  
химически  вещества  показват , че има вероятност  мъжките  
индивиди  да са по-чувствителни  от женските , тогава  се 
използват  животни  от този пол. Когато  изпитването  се 
провежда  върху  мъжки  индивиди , то следва  да бъде  
подходящо  обосновано . 
Използват  се здрави  млади  полово  зрели  животни  от най-често  
употребяваните  за лабораторни  изследвания  видове . Женските  
индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . Всяко  
животно  в началото  на дозирането  му следва  да бъде  на възраст  
между  8 и 12 седмици  и теглото  му следва  да попада  в 
интервала  ± 20 % от средното  тегло  на всички  дозирани  преди  
това животни . 
1.4.2.  Условия  за отглеждане  и хранене  
Температурата  в стаята  на опитните  животни  следва  да бъде  
22 o С (± 3  o С). Въпреки  че относителната  влажност  следва  да 
бъде  поне  30 % и е препоръчително  тя да не надвишава  70 % 
освен  при почистване  на стаята , като целта  е да се постигне  
50—60 % относителна  влажност . Светлината  следва  да бъде  
изкуствена , с редуващи  се 12 часа светъл  период , 12 часа 
тъмен  период . За хранене  могат  да бъдат  използвани  конве­  
нционалните  лабораторни  диети  с неограничен  достъп  до 
питейна  вода . Животните  могат  да бъдат  групирани  в клетките  
по доза, но броят  на животните  в клетка  не трябва  да възпреп­  
ятства  точните  наблюдения  върху  всяко  животно . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 201
 
1.4.3.  Подготовка  на животните  
Животните  са произволно  избрани , маркирани , за да е възможно  
индивидуалното  им идентифициране , и държани  в клетките  си 
поне  5 дни преди  дозирането , за да се аклиматизират  към 
лабораторните  условия . 
1.4.4.  Подготовка  на дозите  
Най-общо  изпитваните  вещества  следва  да бъдат  приемани  в 
постоянен  обем  в рамките  на дозите , които  се изпитват  чрез 
изменения  в концентрацията  на дозирания  препарат . Когато  
обаче  крайният  продукт , който  трябва  да бъде  изследван , е 
под формата  на течност  или смес , за последващата  оценка  на 
риска  от това вещество  може  да се окаже  по-подходяща  
употребата  му в неразредено  състояние , т.е. при постоянна  
концентрация , което  е и изискване  от страна  на някои  регул­  
аторни  органи . Във всеки  случай  обемът  на максималната  доза 
за администриране  не следва  да бъде  завишаван . Максималният  
обем  на течността , която  може  да бъде  въвеждана  наведнъж , 
зависи  от големината  на изследваното  животно . При гризачи  
обикновено  обемът  не надвишава  1 ml/100 g телесно  тегло : 
обаче  в случай  на водни  разтвори  може  да се приемат  
2 ml/100 g телесно  тегло . Във връзка  с изготвянето  на 
дозирани  препарати  се препоръчва , където  е възможно , да се 
използва  воден  разтвор /суспензия /емулсия , следван  първон­  
ачално  от разтвор /суспензия /емулсия  в масло  (напр . царевично  
масло ), а след  това е възможен  разтвор  в други  разтворители . 
Следва  да се знаят  токсикологичните  характеристики  на разт­  
ворителите  с изключение  на водата . Дозите  следва  да бъдат  
приготвяни  кратко  време  преди  приемането  им, освен  когато  е 
известно , че препаратът  остава  стабилен  и в добро  състояние  
през периода , в който  се използва . 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1.  Приемане  на дозите  
Изпитваното  вещество  се приема  на еднократни  дози  чрез 
принудително  хранене  или с подходяща  интубационна  канюла . 
При извънредни  обстоятелства , при които  приемането  на 
еднократна  доза не е възможно , дозата  може  да бъде  давана  
на по-малки  части  през период , който  не може  да превишава  
24 часа. 
Преди  дозирането  животните  следва  да бъдат  поставени  на 
ограничен  режим  на хранене  за известно  време  (напр . на 
плъхове  следва  да не се дава храна , но не и вода  през нощта  
преди  експеримента ; на мишки  в продължение  на 3—4 часа 
следва  да не се предоставя  храна , но не и вода ). След  периода  
на „постене “, животните  следва  да бъдат  претеглени  и 
изпитваното  вещество  да бъде  приложено . След  като веществото  
бъде  прието , може  да не се предоставя  храна  в следващите  3—4 
часа при плъхове  или 1—2 часа при мишки . Когато  дозата  се 
приема  на части  в определен  период  от време , може  да се 
наложи  да бъдат  осигурени  храна  и вода  на животните  в 
зависимост  от продължителността  на периода . 
1.5.2.  Брой  на животните  и нива  на дозите  
Във всеки  етап се използват  по три животни . Нивото  на дозата , 
която  ще бъде  използвана  като начална  доза, се избира  от едно  
от четирите  фиксирани  нива : 5, 50, 300 и 2 000 mg/kg телесно  
тегло . Нивото  на началната  доза следва  да бъде  такова , при 
което  вероятността  да причини  смърт  при някое  от дозираните  
животни  е най-висока . Графичните  алгоритми  на приложение  1 
описват  процедурата , която  трябва  да бъде  следвана  за всяка  от 
началните  дози . Освен  това приложение  4 дава насоки  за клас­  
ифициране  по системата  на ЕС, докато  бъде  въведена  новата  
система  GHS.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 202
 
Когато  по наличната  информация  се предполага , че смъртност  
при начално  дозиране  с най-високото  ниво  (2 000 mg/kg телесно  
тегло ) е малко  вероятна , тогава  се прилага  ограничено  
изпитване . Когато  няма  информация  за изпитваното  вещество , 
с цел хуманно  отношение  към животните  се препоръчва  за 
начална  доза да се използва  300 mg/kg телесно  тегло . 
Интервалът  от време  между  третирането  на групите  се определя  
от началото , продължителността  и остротата  на токсичните  
признаци . Третирането  на животните  със следваща  доза следва  
да бъде  забавено , докато  не се докаже , че дозираните  по-рано  
животни  са останали  живи . 
По изключение  и само  когато  е оправдано  от определени  регул­  
аторни  нужди , може  да бъде  приложена  допълнителна  
фиксирана  доза с по-високо  ниво  5 000 mg/kg телесно  тегло  
(вж. приложение  2). По причини , свързани  с хуманното  
отношение  към животните , изследването  на животни  в 
категория  5 от GHS в обхвата  2 000—5 000 mg/kg е нежелателно  
и следва  да се има предвид  само  когато  съществува  голяма  
вероятност  резултатите  от такова  изследване  да имат  практ­  
ическо  значение  за опазване  здравето  на хората  или животните  
или околната  среда . 
1.5.3.  Ограничено  изпитване  
Ограниченото  изпитване  се използва  предимно  в случаите , при 
които  извършващият  опитите  разполага  с информация , съгласно  
която  изследваният  материал  по всяка  вероятност  не е токсичен , 
т.е. проявява  токсичност  само  над нормативно  ограничените  
дози . Информация  за токсичността  на изпитвания  материал  
може  да бъде  получена  от познания  за подобни  изпитани  
съединения  или подобни  изпитани  смеси  или продукти , като 
се вземат  предвид  идентичността  и процентното  съдържание  
на съставките , за които  е известно , че са с токсикологично  
значение . В случаите , когато  има малко  или няма  информация  
за неговата  токсикологичност , или при които  се очаква  
изпитваният  материал  да бъде  токсичен , следва  да се провежда  
основното  изследване . 
При ниво  на еднократна  доза 2 000mg/kg телесно  тегло  може  да 
бъде  проведено  ограничено  изследване  на 6 животни  (по три 
животни  на етап). По изключение  може  да бъде  проведено  
ограничено  изследване  на три животни  при ниво  на 
еднократната  доза 5 000 mg/kg ( вж. приложение  2). Ако има 
смъртни  случаи , свързани  с веществото , може  да се окаже  необ­  
ходимо  следващите  изследвания  да се проведат  при по-ниски  
нива  на дозиране . 
1.6. НАБЛЮДЕНИЯ  
Животните  се наблюдават  индивидуално , след  поне  еднократно  
дозиране  през първите  30 минути , периодично  през първите  24 
часа, с повишено  внимание  през първите  4 часа и ежедневно  
след  това през общо  14-дневен  период  от време , освен  когато  
е необходимо  да бъдат  извадени  от експеримента  и убити  по 
хуманен  начин  по причини  на хуманно  отношение  към 
животните , или са намерени  мъртви . Продължителността  на 
наблюдението  обаче  не следва  да бъде  строго  фиксирана . Тя 
следва  да се определя  въз основа  на токсичните  реакции , 
началния  момент  и продължителността  на периода  за възста­  
новяване  и може  да бъде  увеличена , когато  се сметне  за необ­  
ходимо . Периодите  от време , в които  се появяват  и изчезват  
признаците  на токсичност , са важни , особено  ако има 
тенденция  токсичните  признаци  да бъдат  забавени  (12). 
Всички  наблюдения  систематично  се записват , с отделни  
записи , направени  за всяко  животно . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 203
 
Допълнителни  изследвания  ще бъдат  необходими , ако 
животните  продължат  да показват  признаци  на токсичност . 
Наблюденията  следва  да включват  промените  в кожата  и 
козината , очите  и лигавицата  и също  дихателната , кръвоносната , 
автономната  и централната  нервна  система , соматомоторната  
активност  и моделите  на поведение . Вниманието  следва  да 
бъде  насочено  към наблюдения  на треперене , конвулсии , 
слюноотделяне , диария , летаргия , сън и кома . Следва  да бъдат  
взети  предвид  принципите  и критериите , резюмирани  в Ръково­  
дството  за хуманен  край  (9). Животните , намерени  в терминално  
състояние , и животните , показващи  дълбока  болка  или 
непрекъснати  признаци  на дълбоко  страдание , следва  да бъдат  
убити  по хуманен  начин . Когато  животните  са убити  по 
хуманни  причини  или са намерени  мъртви , времето  на смъртта  
им следва  да бъде  записано  колкото  е възможно  по-точно . 
1.6.1.  Телесно  тегло  
Индивидуалното  тегло  на животните  следва  да бъде  измервано  в 
кратък  интервал  от време  преди  приемането  на изпитваното  
вещество  и поне  веднъж  седмично  след  това. Промените  в 
теглото  следва  да бъдат  изчислявани  и записвани . В края  на 
експеримента  оцелелите  животни  се претеглят  и след  това се 
убиват  по хуманен  начин . 
1.6.2.  Патология  
Всички  изследвани  животни  (включително  умрелите  по време  на 
експеримента  или извадените  от експеримента  животни  по 
причини  на хуманно  отношение  към животните ) следва  да 
бъдат  подложени  на цялостна  аутопсия . Всички  цялостни  
патологични  изменения  във всяко  животно  следва  да бъдат  
записани . Микроскопските  изследвания  на органите , даващи  
доказателства  за цялостна  патология  при животните , оцелели  
24 часа или повече  след  първоначалното  дозиране , също  могат  
да допринесат  за получаването  на полезна  информация . 
2. ДАННИ  
Следва  да бъдат  осигурени  индивидуални  данни  за всяко  
животно . Освен  това всички  данни  следва  да бъдат  обобщени  
в таблична  форма , показваща  броя  на използваните  животни  във 
всяка  от изследваните  групи , броя  на животните , проявяващи  
признаци  за токсичност , броя  на животните , намерени  мъртви  
по време  на изследването  или убити  по хуманни  причини , 
времето  на настъпване  на смъртта  на животинския  индивид , 
описание  и развитие  във времето  на токсичните  ефекти  и обрат­  
имостта  им, както  и заключенията  от аутопсията . 
3. ОТЧИТАНЕ  
3.1. Протокол  от изпитването  
Протоколът  от изпитването  по целесъобразност  следва  да 
включва  следната  информация : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  форма , чистота  и, където  е подходящо , физикох­  
имични  свойства  (включително  изомеризация ); 
— данни  за идентичността , включително  САS номер . 
Разтворител  (ако има такъв ): 
— обосноваване  на избора  на разтворител , ако е различен  от 
вода . 
Изследвани  животни : 
— използвани  видове /породи ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 204
 
— микробиологично  състояние  на животните , когато  е 
известно ; 
— брой , възраст  и пол на животните  (включително , при необ­  
ходимост , обосноваване  на използването  на мъжки  индивиди  
вместо  женски ); 
— водоизточник , условия  за отглеждане , диета  и т.н. 
Условия  на експеримента : 
— подробности  за формулирането  на изпитваното  вещество , 
включително  подробности  за физичното  състояние  на 
приемания  материал ; 
— подробности , свързани  с приемането  на изпитваното  
вещество , обеми  на дозите  и време  на дозиране ; 
— подробности  във връзка  с качеството  на храната  и водата  
(включително  вид/източник  на диетата , водоизточник ); 
— обосновка  на избора  на началната  доза. 
Резултати : 
— таблици /диаграми  на получените  данни  и ниво  на дозата  за 
всяко  животно  (т.е. при които  животното  показва  признаци  
на токсичност , включително  смърт ; природа , острота  и 
продължителност  на ефектите ); 
— таблици /диаграми  на телесното  тегло  и на измененията  в 
него ; 
— индивидуални  тегла  на животните  през деня  на дозиране , на 
седмични  интервали  след  това и при смърт ; 
— дата и време  на смъртта , ако умрат  преди  приключване  на 
програмата ; 
— развитие  във времето  от първоначалното  появяване  на 
признаци  за токсичност  и дали  е имало  обратимост  за 
всяко  животно ; 
— заключения  при аутопсията  и хистопатологични  заключения  
за всяко  животно , ако има такива . 
Дискусия  и интерпретиране  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Roll R., Нцfer-Bosse Th. And Kayser D. (1986). New 
Perspectives in Acute Toxicity Testing of Chemicals. Toxicol. Lett., Suppl. 31, 86
 
(2) Roll R., Riebschlfl дger M., Mischke U. and Kayser D. (1989). 
Neue Wege zur Bestimmung der akuten Toxizit дt von Chemi ­
kalien. Bundesgesundheitsblatt 32, 336—341.  
(3) Diener W., Sichha L., Mischke U., Kayser D. and Schlede E. 
(1994). The Biometric Evaluation of the Acute-Toxic-Class 
Method (Oral). Arch. Toxicol. 68, 559—610  
(4) Diener W., Mischke U., Kayser D. and Schlede E. (1995). The 
Biometric Evaluation of the OECD Modified Version of the Acute-Toxic-Class Method (Oral). Arch. Toxicol. 69, 729—734.
 
(5) Diener W., and Schlede E. (1999) Acute Toxicity Class 
Methods: Alterations to LD/LC  50 Tests. ALTEX 16, 129—134  
(6) Schlede E., Mischke U., Roll R. and Kayser D. (1992). A 
National Validation Study of the Acute-Toxic-Class Method 
— An Alternative to the LD  50 Test. Arch. Toxicol. 66, 
455—470.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 205
 
(7) Schlede E., Mischke U., Diener W. and Kayser D. (1994). The 
International Validation Study of the Acute-Toxic-Class 
Method (Oral). Arch. Toxicol. 69, 659—670.  
(8) OECD (2001) Guidance Document on Acute Oral Toxicity 
Testing. Environmental Health and Safety Monograph Series 
on Testing and Assessment N. 24. Paris.  
(9) OECD (2000) Guidance Document on the Recognition, 
Assessment and Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation. Environ ­
mental Health and Safety Monograph Series on Testing and 
Assessment N 19.
 
(10) OECD (1998) Harmonized Integrated Hazard Classification 
System For Human Health And Environmental Effects Of 
Chemical Substances as endorsed by the 28th Joint Meeting of 
the Chemicals Committee and the Working Party on Chemicals in November 1998, Part 2, p. 11 [http://webnetl.oecd.org/oecd/ pages/home/displaygeneral/0,3380,EN-documents-521-14- №-24- 
№-0,FF.html]
 
(11) Lipnick R. L., Cotruvo, J. A., Hill R. N., Bruce R. D., Stitzel 
K. A., Walker A. P., Chu I; Goddard M., Segal L., Springer J. A. and Myers R. C. (1995) Comparison of the Up-and Down, 
Conventional LD
 50 , and Fixed Dose Acute Toxicity Proce ­
dures. Fd. Chem. Toxicol 33, 223—231.  
(12) Chan P. K. and A. W. Hayes. (1994). Chap. 16. Acute 
Toxicity and Eye Irritancy.  Principles and Methods of Toxi ­
cology.  Third Edition. A. W. Hayes, Editor. Raven Press, Ltd., 
New York, USA.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 206
 
ПРИЛОЖЕНИЕ  1 
ПРОЦЕДУРА , КОЯТО  ТРЯБВА  ДА БЪДЕ  СЛЕДВАНА  ЗА ВСЯКА  ОТ 
НАЧАЛНИТЕДОЗИ  
ОБЩИ  БЕЛЕЖКИ  
За всяка  начална  доза в това приложение  са включени  съответните  схеми  за 
изпитване , които  трябва  да бъдат  следвани . 
— Приложение  1а: началната  доза е 5 mg/kg тт 
— Приложение  1б: началната  доза е 50 mg/kg тт 
— Приложение  1в: началната  доза е 300 mg/kg тт 
— Приложение  1г: началната  доза е 2 000 mg/kg тт 
В зависимост  от броя  на убитите  по хуманен  начин  или умрели  животни  
процедурата  за изпитване  следва  посочените  стрелки . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 207
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 208
 ▼B 
ПРИЛОЖЕНИЕ  1А 
ПРОЦЕДУРА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  С НАЧАЛНА  ДОЗА  5 МG/КG ТЕЛЕСНО  ТЕГЛО

 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 209
 ▼B 
ПРИЛОЖЕНИЕ  1Б 
ПРОЦЕДУРА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  С НАЧАЛНА  ДОЗА  50 МG/КG ТЕЛЕСНО  ТЕГЛО

 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 210
 ▼B 
ПРИЛОЖЕНИЕ  1В 
ПРОЦЕДУРА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  С НАЧАЛНА  ДОЗА  300 МG/КG ТЕЛЕСНО  ТЕГЛО

 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 211
 ▼B 
ПРИЛОЖЕНИЕ  1Г 
ПРОЦЕДУРА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  С НАЧАЛНА  ДОЗА  2 000 МG/КG ТЕЛЕСНО  ТЕГЛО

 ПРИЛОЖЕНИЕ  2 
КРИТЕРИИ  ЗА КЛАСИФИЦИРАНЕ  НА ИЗПИТВАНОТО  
ВЕЩЕСТВО  С ОЧАКВАНИ  СТОЙНОСТИ  НА LD  50 НАД  2 000 
МG/КG БЕЗ, НЕОБХОДИМОСТ  ОТ ИЗПИТВАНЕ  
Критериите  за категория  на опасност  5 са предназначени  да подпомогнат  
идентифицирането  на изпитвани  вещества , които  представляват  относ­  
ително  ниска  остра  токсикологична  опасност , но които  при определени  
обстоятелства  могат  да представляват  опасност  за уязвимото  поколение . 
Тези  вещества  се очаква  да имат  орална  или дермална  LD  50 в обхвата  от 
2 000 до 5 000 mg/kg или еквивалентни  дози  при други  начини  на 
въвеждане . Изпитваното  вещество  следва  да бъде  класифицирано  в 
категория  на опасност , определена  по: 2 000 mg/kg < LD  50 < 5 000 mg/kg 
(категория  5 от GHS) в следните  случаи : 
а) ако е насочено  към тази категория  по някоя  от схемите  за изследване  от 
приложения  1а—1г, основани  на смъртни  инциденти ; 
б) ако вече съществува  достоверно  доказателство , което  показва , че LD  50 е 
в обхвата  от стойности  на категория  5, или други  изследвания  върху  
животни , или токсикологични  изследвания  върху  хора  дават  основание  
за сериозно  безпокойство  поради  въздействие  върху  здравето  на човека ; 
в) чрез данни  от екстраполации , оценяване  или измерване , ако няма  
основание  да се отнесе  към по-висок  клас на опасност , и 
— има налична  достоверна  информация , показваща  значителни  токсик­  
ологични  ефекти  при хората , или 
— се наблюдава  смърт  при изпитване  със стойности , по-високи  от 
посочените  в категория  4 по орален  начин  на въвеждане , или 
— когато  експертната  оценка  потвърди  значимите  клинични  признаци  
на токсичност  при изпитване  със стойности , по-високи  от тези в 
категория  4, освен  при диария , пилоерекция  или недобър  външен  
вид, или 
— когато  експертната  оценка  потвърди  достоверната  информация , която  
посочва  потенциална  възможност  за значителни  остри  ефекти  от 
други  изследвания  върху  животни . 
ИЗСЛЕДВАНЕ  С ДОЗИ  НАД  2 000 МG/КG 
Признавайки  необходимостта  от запазване  на хуманно  отношение  към 
животните , изследването  на животни , попадащи  в обхвата  на категория  5 
(5 000 mg/kg), не е препоръчително  и следва  да бъде  разглеждано  само  
когато  има голяма  вероятност  резултатите  от такова  изследване  да имат  
пряко  практическо  значение  за опазване  здравето  на хората  или 
животните  (10). Следва  да не бъдат  провеждани  допълнителни  изследвания  
при по-високи  нива  на дозите . 
Когато  за изследването  се изисква  прилагане  на доза 5 000 mg/kg, се 
изпълнява  само  един  етап (т.е. три животни ). Ако първото  дозирано  
животно  умре , тогава  продължава  дозирането  при 2 000 mg/kg в съотв­  
етствие  с графичния  алгоритъм  в приложение  1. Ако първото  животно  
оцелее , се дозират  и другите  две животни . Ако само  едно  от трите  
животни  умре , се очаква  стойността  на LD  50 да надвишава  5 000 mg/kg. 
Ако и двете  животни  умрат , тогава  дозирането  продължава  при 2 000 mg/kg.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 212
 
ПРИЛОЖЕНИЕ  3 
МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  Б.1б: Ръководство  за класифициране  съгласно  схемата  на ЕС 
за обхващане  на преходния  период  до пълното  прилагане  на Глобалната  система  за 
хармонизиране  на класификацията  (GНS) (взето  от препратка  8)
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 213
 
▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 214
 
▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 215
 
▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 216
 
Б.2. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  (ИНХАЛАТОРНА ) 
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
403 на ОИСР  (2009 г.) (1). Първоначалното  Указание  за изпитване  за 
остра  инхалаторна  токсичност  403 (TG 403) е прието  през 1981 година . 
Настоящият  преработен  метод  за изпитване  Б.2. (като равностоен  на 
преработеното  TG 403) е разработен  така, че да бъде  по-гъвкав , да се 
намали  използването  на животните , както  и да задоволи  нуждата  от 
регулиране . Преработеният  метод  за изпитване  включва  два вида  
изследвания : Традиционен  протокол  за LC  50 и протокол  за Конце­  
нтрация  × Време  (C × t). Първични  характеристики  на настоящия  
метод  за изпитване  са способността  да предостави  взаимовръзка  конце­  
нтрация -отговор , варираща  от нелетален  до летален  изход , с цел 
извеждане  на медианна  летална  концентрация  (LC  50 ), нелетална  
прагова  концентрация  (напр . LC  01 ) и наклон  на кривата , както  и да 
идентифицира  потенциална  възприемчивост  като функция  от пола . 
Протоколът  за Концентрация  × Време  следва  да се използва , когато  е 
налице  специфична  регулаторна  или научна  необходимост , която  
изисква  изпитване  на животни  с различна  продължителност , като 
например  за целите  на планирането  на ответни  действия  при 
извънредни  ситуации  [например , за разработване  на указателни  
стойности  за равнищата  на остра  експозиция  (AEGL), указателни  
стойности  за планиране  на ответни  действия  при извънредни  
ситуации  (ERPG) или указателни  стойности  на прагови  равнища  на 
остра  експозиция  (AETL)], или за планиране  на земеползването . 
2. Указания  за провеждането  и интерпретирането  на изследвания  по 
настоящия  метод  за изпитване  могат  да бъдат  намерени  в Ръково­  
дството  за изпитвания  на остра  инхалаторна  токсичност  (GD 39) (2).  
3. Определенията , използвани  в контекста  на настоящия  метод  за 
изпитване , са дадени  в края  на тази глава  и в GD 39 (2).  
4. Настоящият  метод  за изпитване  дава възможност  за охарактеризиране  
на изпитвания  химикал  и за количествена  оценка  на риска , който  
представлява , и позволява  степенуването  и класифицирането  на 
изпитваните  химикали  съгласно  Регламент  (ЕО) № 1272/2008 (3). GD 
39 (2) предоставя  указания  за избора  на подходящ  метод  за изпитване  
за остра  токсичност . Когато  се изисква  информация  само  за класиф­  
ициране  и етикетиране , по принцип  се препоръчва  глава  Б.52. от 
настоящото  приложение  (4) [вж. GD 39 (2)]. Настоящият  метод  за 
изпитване  Б.2. не е специално  предназначен  за изпитването  на специ­  
ализирани  материали , като малко  разтворими  изометрични  или 
влакнести  материали , или произведени  наноматериали . 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
5. Преди  обсъждането  на изпитване  в съответствие  с настоящия  метод  за 
изпитване  цялата  налична  информация  за изпитвания  химикал , включ­  
ително  съществуващите  изследвания  [например  глава  Б.52. от 
настоящото  приложение  (4)], чиито  данни  са в подкрепа  да не се 
извършва  допълнително  изпитване , следва  да бъдат  разгледани  от 
лабораторията , извършваща  изпитвания , с цел да се сведе  до 
минимум  използването  на животни . Информацията , която  може  да 
помогне  при избора  на най-подходящия  вид, порода , пол, режим  на 
експозиция , и на подходящи  концентрации  за изпитване , включва  
идентификацията  на изпитвания  химикал , неговата  химична  структура  
и физичните  и химичните  му свойства ; резултатите  от всякакви  
изпитвания  за токсичност , извършени  in vitro  или in vivo ; очаквани  
употреби  и потенциал  за експозиция  на човека ; налични  данни  за (кол­  
ичествена ) зависимост  структура -активност  и токсикологични  данни  за 
вещества  със сходна  структура  [вж. GD 39 (2)].  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 217
 
6. Следва  да се избягва , доколкото  е възможно , изпитване  на корозивни  
и/или дразнещи  изпитвани  химикали  при концентрации , които  се 
очаква  да предизвикат  силна  болка  и/или дистрес . Потенциалът  за 
корозивно /дразнещо  действие  следва  да се оценява  чрез експертна  
оценка  с използване  на доказателства  като човешки  опит  и опит  с 
животни  (напр . от изследвания  с повтарящи  се дози , проведени  при 
концентрации  с некорозивно /дразнещо  действие ), съществуващи  
данни  за in vitro  (напр . от глави  Б.40. (5), Б.40А. (6) от настоящото  
приложение , или ОИСР  TG 435 (7)), стойности  на рН, информация  за 
сходни  вещества  или всякакви  други  подходящи  данни , за целите  на 
проучването  дали  може  да бъде  отменено  по-нататъшно  изпитване . За 
специфични  регулаторни  нужди  (напр . при планиране  за извънредни  
ситуации ), настоящият  метод  за изпитване  може  да се използва  за 
експозиция  на животни  на тези материали , защото  предоставя  на ръко­  
водителя  на изследването  или на главния  изследовател  контрол  върху  
избора  на целеви  концентрации . Въпреки  това, целевите  концентрации  
следва  да не предизвикват  силно  дразнещи /корозивни  ефекти , но да са 
достатъчни , за да се разшири  кривата  концентрация -отговор  до 
равнища , при които  се постига  регулаторната  и научната  цел на 
изпитването . Тези  концентрации  следва  да бъдат  подбирани  за всеки  
отделен  случай  и следва  да се предостави  обосновка  за избора  на 
концентрацията  [вж. GD 39 (2)].  
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
7. Настоящият  преработен  метод  за изпитване  Б.2. е разработен  така, че 
да бъде  получена  достатъчно  информация  за острата  токсичност  на 
изпитвания  химикал , която  дава възможност  за неговото  класиф­  
ициране , и да се предоставят  данни  за леталността  (напр . LC  50 , LC  01 
и наклон ) за единия  от половете  или за двата  пола , необходими  за 
количествена  оценка  на риска . При настоящия  метод  за изпитване  се 
предлагат  два метода . Първият  метод  е традиционен  протокол , в който  
има експозиция  на групи  от животни  на пределна  концентрация  (изп­  
итване  при пределна  концентрация ) или на поредица  от концентрации  
чрез прилагане  на поетапна  процедура  с предварително  определена  
продължителност , обичайно  равна  на 4 часа. Друга  продължителност  
на експозицията  може  да се прилага  за изпълнение  на специфични  
регулаторни  цели . Вторият  метод  е протокол  (C × t), в който  има 
експозиция  на групи  от животни  на една  (пределна  концентрация ) 
или на поредица  от множество  концентрации  с множество  продължит­  
елности . 
8. Умиращи  животни  или животни , очевидно  изпитващи  болка  или 
показващи  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , следва  да 
бъдат  умъртвявани  по хуманен  начин , като при интерпретирането  на 
резултатите  от изпитванията  те се третират  по същия  начин , както  
животните , умрели  по време  на изпитването . Критериите  за вземане  
на решение  за умъртвяване  на умиращи  или силно  страдащи  животни  
и указанията  за разпознаване  на предвидима  или неизбежна  смърт  са 
предмет  на Ръководство  на ОИСР  № 19 за хуманен  край  (8). 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
9. Следва  да се използват  здрави  млади  полово  зрели  животни  от 
обичайно  употребяваните  за лабораторни  изследвания  породи . Предп­  
очитаният  вид е плъхът  и трябва  да се представи  обосновка , ако са 
използвани  други  видове . 
Подготовка  на животните  
10. Женските  индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . Към 
деня  на експозицията  животните  следва  да са млади  полово  зрели  
индивиди  на възраст  от 8 до 12 седмици  и с телесно  тегло  в рамките  
на ± 20 % от средното  тегло  за всеки  пол за всички  по-рано  
експонирани  животни  от същата  възраст . Животните  се избират  
произволно  и се маркират  за индивидуална  идентификация . 
Животните  се държат  в техните  клетки  най-малко  5 дни преди  
началото  на изпитването , за да се даде  възможност  за аклиматизиране  
към лабораторните  условия . Необходимо  е също  животните  да се 
аклиматизират  към изпитвателната  апаратура  за кратък  период  преди  
изпитването , тъй като това ще намали  стреса , предизвикан  от 
въвеждането  в новата  среда . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 218
 
Отглеждане  на животните  
11. Температурата  на помещението , в което  се отглеждат  опитните  
животни , следва  да бъде  22 ± 3 °C. В идеалния  случай  относителната  
влажност  следва  да бъде  поддържана  в интервала  от 30—70 %, макар  
че поддържането  в този интервал  може  да не е възможно , когато  се 
използва  вода  като носител . Преди  и след  експозициите  животните  
обичайно  следва  да се поставят  в клетките  в групи  по пол и конце­  
нтрация , но броят  на животните  в дадена  клетка  не следва  да възпреп­  
ятства  точните  наблюдения  над всяко  животно  и следва  да свежда  до 
минимум  загубите  поради  канибализъм  и борба . За животни , при които  
експозицията  е само  през носа , може  да е необходимо  същите  да бъдат  
аклиматизирани  към ограничителните  тръби . Ограничителните  тръби  
не следва  да причиняват  ненужен  стрес  у животните  поради  
физични , термични  или причини , свързани  с обездвижване . Огранича­  
ването  може  да засегне  физиологични  крайни  точки  като телесната  
температура  (хипертермия ) и/или минутния  дихателен  обем . Ако са 
налични  типови  данни , които  показват , че не настъпват  такива  
осезаеми  промени , тогава  не е необходимо  предварително  адаптиране  
към ограничителните  тръби . Животни , при които  експозицията  на 
аерозол  е на цялото  тяло , следва  да се настаняват  отделно  по време  
на експозицията , за да се предотврати  възможността  животното  да 
филтрува  изпитвания  аерозол  през козината  на намиращи  се в същата  
клетка  други  животни . Освен  по време  на експозицията , могат  да се 
използват  конвенционални  и сертифицирани  лабораторни  храни , 
придружени  с неограничено  количество  битова  питейна  вода . Освет­  
лението  трябва  да бъде  изкуствено , като последователността  е 12 часа 
светлина /12 часа тъмнина . 
Инхалационни  камери  
12. При избора  на инхалационна  камера  следва  да бъдат  разгледани  
естеството  на изпитвания  химикал  и целта  на изпитването . Предпоч­  
итаният  начин  на експозиция  е само  през носа  (в този термин  се 
включват  експозиции  само  на главата , само  през носа  или само  през 
муцуната ). Експозицията  само  през носа  обичайно  се предпочита  при 
изследване  на течни  и твърди  аерозоли , както  и на пари , които  могат  да 
кондензират  с образуване  на аерозоли . Специалните  цели  на 
изследването  могат  да се постигнат  по-добре  чрез използване  на 
режим  на експозиция  на цялото  тяло , но това следва  да бъде  обос­  
новано  в доклада  от изследването . За да се гарантира  стабилност  на 
атмосферата  при използване  на камера  за експозиция  на цялото  тяло , 
общият  обем  на изпитваните  животни  не трябва  да надвишава  5 % от 
обема  на камерата . Принципите  на техниките  за експозиция  само  през 
носа  и за експозиция  на цялото  тяло  и техните  специфични  предимства  
и недостатъци  са описани  в GD 39 (2).  
УСЛОВИЯ  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Прилагане  на концентрациите  
13. Експозициите  само  през носа  при плъхове  могат  да бъдат  с произволна  
продължителност , най-много  до 6 часа. Експозициите  само  през носа  
при мишки  по принцип  не трябва  да надвишават  4 часа. Ако са необ­  
ходими  изследвания  при по-голяма  продължителност , трябва  да се 
представи  обосновка  [вж. GD 39 (2)]. Животните , експонирани  на 
аерозоли  в камери  за цялото  тяло , следва  да се настаняват  поотделно , 
за да се предотврати  поглъщането  на изпитвания  химикал  в резултат  от 
поддържане  на външния  вид на други  индивиди  в същата  клетка . По 
време  на експозицията  не трябва  да се дава храна . Вода  може  да се 
дава по време  на експозиция  на цялото  тяло . 
14. Животните  се експонират  на изпитвания  химикал , който  представлява  
газ, пари , аерозол  или смес  от тях. Агрегатното  състояние , което  трябва  
да бъде  изпитано , зависи  от физичните  и химичните  свойства  на 
изпитвания  химикал , избраната  концентрация , и/или най-вероятната  
физична  форма  по време  на манипулирането  и употребата  на 
изпитвания  химикал . Хигроскопични  и химически  реактивоспособни  
изпитвани  химикали  следва  да бъдат  изпитвани  в среда  от сух 
въздух . Следва  да се полагат  грижи  за избягване  достигането  на конце­  
нтрации , при които  може  да бъде  причинена  експлозия . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 219
 
Разпределение  според  размера  на частиците  
15. Следва  да бъде  извършено  определяне  на размера  на частиците  за 
всички  аерозоли  и за парите , които  могат  да кондензират  с образуване  
на аерозоли . За да могат  да бъдат  експонирани  всички  относими  части  
на дихателните  пътища  се препоръчват  аерозоли  с диаметър , равен  на 
аеродинамичния  диаметър  при медианата  на масата  на 
частиците  (MMAD), намиращ  се в диапазон  от 1 до 4 μm, и с геом­  
етрично  стандартно  отклонение  (σ g ) в диапазон  от 1,5 до 3,0 (2) (9) 
(10). Въпреки  че следва  да се положи  разумно  усилие  за спазване  на 
този стандарт , ако това не може  да бъде  постигнато  следва  да бъде  
предоставена  експертна  оценка . Например  стойностите  за метални  пари  
могат  да бъдат  по-малки  от този стандарт , а за заредени  частици , 
влакна  и хигроскопични  материали  (които  увеличават  размера  си във 
влажната  среда  на дихателните  пътища ) могат  да надхвърлят  този 
стандарт . 
Подготовка  на изпитвания  химикал  в носител  
16. За постигане  на подходяща  концентрация  и размер  на частиците  на 
изпитвания  химикал  в атмосферата  може  да бъде  използван  носител . 
По правило  следва  да бъде  предпочитана  водата . Частиците  от даден  
материал  могат  да бъдат  подложени  на механични  процеси , за да се 
постигне  изискваното  разпределение  според  размера  на частиците , но 
трябва  да се вземат  мерки  изпитваният  химикал  да не бъде  разложен  
или променен . В случаите , когато  се предполага , че механичните  
процеси  са довели  до изменение  на състава  на изпитвания  химикал  
(например  причинена  от триене  много  висока  температура  в резултат  
от прекомерно  смилане ), съставът  на изпитвания  химикал  следва  да 
бъде  проверен  по аналитичен  път. Следва  да бъдат  взети  адекватни  
мерки  да не се допусне  замърсяване  на изпитвания  химикал . Не е 
необходимо  да се изпитват  неронливи  гранулирани  материали , които  
са целенасочено  изготвени  така, че да не могат  да бъдат  инхалирани . За 
да се докаже , че при манипулирането  на гранулирания  материал  не се 
произвеждат  частици , които  могат  да бъдат  вдишвани , следва  да се 
приложи  изпитване  чрез триене . Ако при изпитване  чрез триене  
бъдат  произведени  частици , които  могат  да бъдат  вдишвани , следва  
да се извърши  изпитване  за инхалаторна  токсичност . 
Контролни  животни  
17. Паралелна  отрицателна  контролна  група  (въздух ) не е необходима . 
Когато  за подпомагане  генерирането  на атмосферата  за изпитване  се 
използва  носител , различен  от вода , контролна  група  за носителя  
следва  да се използва  само  в случай  че не са достъпни  данни  за 
минали  периоди  за инхалаторна  токсичност . Ако при дадено  
изследване  за токсичност  на изпитван  химикал  в състав  с носител  не 
бъде  установена  токсичност , от това следва , че носителят  не е токсичен  
при концентрацията  на изпитване ; следователно  не е необходима  
контрола  за носителя . 
МОНИТОРИНГ  НА УСЛОВИЯТА  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Въздушен  поток  в камерата  
18. Въздушният  поток  през камерата  трябва  да бъде  внимателно  
контролиран , непрекъснато  наблюдаван  и записван  най-малко  на 
всеки  час по време  на всяка  експозиция . Мониторингът  на конце­  
нтрацията  (или стабилността ) на атмосферата  за изпитване  
представлява  цялостно  измерване  на всички  динамични  параметри  и 
предоставя  непряко  средство  за контрол  на всички  относими  
динамични  параметри , свързани  с генериране  на атмосфера . 
Специално  внимание  следва  да се обърне  на избягване , при камери  
за експозиция  само  през носа , на повторно  инхалиране  в случаи , при 
които  системата  за експозиция  не може  да осигури  адекватна  динамика  
на потока  на атмосферата  с изпитвания  химикал . Съществуват  
предписани  методологии , които  могат  да се използват  за доказване , 
че в рамките  на избраните  работни  условия  не настъпва  повторно  
инхалиране  (2) (11). Концентрацията  на кислород  следва  да бъде  не 
по-малко  от 19 %, а концентрацията  на въглероден  диоксид  не трябва  
да превишава  1 %. Ако има основание  да се смята , че тези стандарти  
не могат  да бъдат  спазени , концентрациите  на кислорода  и на 
въглеродния  диоксид  следва  да се измерват . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 220
 
Температура  и относителна  влажност  на камерата  
19. Температурата  в камерата  трябва  да се поддържа  на 22 ± 3 °C. Относ­  
ителната  влажност  в зоната  на дишане  на животните  — както  за 
експозиция  само  през носа , така и за експозиция  на цялото  тяло  — 
трябва  да бъде  наблюдавана  и записвана  най-малко  три пъти  за продъ­  
лжителности  до 4 часа и на всеки  час за по-кратки  продължителности . 
В идеалния  случай  относителната  влажност  трябва  да бъде  поддържана  
в диапазона  между  30 и 70 %, но това може  или да се окаже  
непостижимо  (например  при изпитване  на смеси  на основата  на 
вода ), или да не може  да бъде  измерено  поради  въздействие  на 
изпитвания  химикал  върху  метода  за изпитване . 
Изпитван  химикал : Номинална  концентрация  
20. Когато  е осъществимо , номиналната  концентрация  в камерата  за 
експозиция  следва  да се изчислява  и записва . Номиналната  конце­  
нтрация  е масата  на генерирания  изпитван  химикал , разделена  на 
общия  обем  въздух , преминал  през камерната  система . Номиналната  
концентрация  не се използва  за характеризиране  на експозицията  на 
животните , а сравнение  на номиналната  и действителната  конце­  
нтрация  дава показание  за ефикасността  на генериране  на системата  
за изпитване  и следователно  може  да се използва  за откриване  на 
проблеми  при генерирането . 
Изпитван  химикал : Действителна  концентрация  
21. Действителната  концентрация  е концентрацията  на изпитвания  химикал  
в зоната  на дишане  на животните  в дадена  инхалационна  камера . 
Действителни  концентрации  могат  да бъдат  получени  чрез специфични  
методи  (например  чрез пряко  пробовземане , свързани  с адсорбция  или 
с химична  реакция  методи  и последващо  аналитично  охарактеризиране ) 
или чрез неспецифични  методи  като гравиметричен  анализ  с 
филтруване . Използването  на гравиметричен  анализ  е приемливо  само  
за еднокомпонентни  прахови  аерозоли  или за аерозоли  от ниско  
летливи  течности  и следва  да бъде  подпомогнато  от подходящо  спец­  
ифично  за изпитвания  химикал  охарактеризиране  чрез предварително  
изследване . Концентрацията  на многокомпонентни  прахови  аерозоли  
също  може  да бъде  определяна  чрез гравиметричен  анализ . Това  
обаче  изисква  аналитични  данни , които  доказват , че съставът  на 
намиращия  се във въздуха  материал  е подобен  на този на изходния  
материал . Ако тази информация  не е налична , може  да е необходимо  
извършване  на анализ  на изпитвания  химикал  (в идеалния  случай  в 
състоянието , в което  е разтворен  във въздуха ), повтарящо  се на 
редовни  интервали  по време  на изследването . За агенти  в аерозолна  
форма , които  могат  да се изпаряват  или да сублимират , следва  да се 
покаже , че всички  фази  са събрани  по избрания  метод . Целевата , 
номиналната  и действителната  концентрации  следва  да бъдат  
посочени  в доклада  от изследването , но в статистически  анализи  за 
изчисляване  на стойностите  на леталната  концентрация  се използват  
само  действителните  концентрации . 
22. По възможност  следва  да се използва  една  партида  от изпитвания  
химикал , като изпитваната  проба  следва  да се съхранява  при условия , 
при които  се поддържат  нейната  чистота , хомогенност  и устойчивост . 
Преди  началото  на изследването  следва  да се извърши  
охарактеризиране  на изпитвания  химикал , включително  неговата  
чистота  и, ако е технически  осъществимо , идентичността , както  и 
количествата  на определените  замърсители  и примеси . Това  може  да 
бъде  доказано  от, но не се ограничава  до, следните  данни : време  на 
задържане  и относителна  площ  на пика , получена  чрез масспектром­  
етричен  или газово - хроматографски  анализ  молекулна  маса , или други  
оценки . Въпреки  че лабораторията , извършваща  изпитвания , не носи  
отговорност  за идентифицирането  на пробата  за изпитване , може  да е 
разумно  лабораторията , извършваща  изпитвания , да потвърди  
охарактеризирането  на финансиращия , дори  и в ограничена  степен  
(например  цвят , физична  природа  и др.). 
23. Атмосферата  на експозицията  трябва  да бъде  поддържана  постоянна , 
доколкото  е практически  възможно , и да бъде  наблюдавана  
непрекъснато  и/или периодично  в зависимост  от метода  за анализ . 
Когато  се прилага  периодично  пробовземане  пробите  от атмосферата  в 
камерата  трябва  да се вземат  най-малко  два пъти  при четиричасово  
изследване . Ако това е практически  неосъществимо  поради  ограничена  
скорост  на въздушния  поток  или ниска  концентрация , през целия  период  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 221
 
на експозиция  може  да бъде  извършено  само  едно  пробовземане . Ако се 
получат  значителни  колебания  в стойностите  между  отделните  проби , 
следващите  концентрации  следва  да бъдат  изпитвани  с четири  пробовз­  
емания  на експозиция . Индивидуалните  стойности  на концентрациите  в 
камерата  не трябва  да се отклоняват  от средната  концентрация  с повече  
от ± 10 % за газовете  и парите  или ± 20 % за течните  или твърдите  
аерозоли . Времето  за уравновесяване  на камерата  (t 95 ) следва  да се 
изчислява  и записва . Продължителността  на дадена  експозиция  
обхваща  времето , за което  се генерира  изпитваният  химикал , като при 
това се взема  предвид  изискваният  период  за постигане  на t 95 . Указания  
за оценката  на t 95 могат  да бъдат  намерени  в GD 39 (2).  
24. При много  сложни  смеси , съставени  от газове /пари  и аерозоли  
(например  атмосфера  след  горене  и изпитвани  химикали , отделяни  от 
целеви  продукти /оборудване  за крайна  употреба ), всяка  фаза  може  да 
реагира  по различен  начин  в инхалационната  камера  и следователно  от 
всяка  фаза  (газ/пари  и аерозол ) следва  да бъде  избрано  най-малко  едно  
вещество  (аналит ), служещо  като показател , като обичайно  това е 
основното  активно  вещество  в сместа . Когато  изпитваният  химикал  е 
смес , аналитичната  концентрация  следва  да се докладва  за сместа , а не 
само  за активното  вещество  или за компонента  (аналита ). Допълн­  
ителна  информация  относно  действителните  концентрации  може  да 
бъде  намерена  в GD 39 (2).  
Изпитван  химикал : Разпределение  според  размера  на частиците  
25. Разпределението  според  размера  на частиците  на аерозоли  трябва  да се 
определи  най-малко  два пъти  по време  на всяка  4-часова  експозиция , 
като се използва  каскаден  импактор  или алтернативен  инструмент , като 
например  спектрометър  за определяне  на размера  на аеродинамични  
частици . Ако може  да бъде  доказана  равностойността  на резултатите , 
получени  от каскадния  импактор  и от алтернативния  инструмент , 
тогава  алтернативният  инструмент  може  да бъде  използван  по време  
на цялото  изследване . Успоредно  с основния  инструмент  следва  да 
бъде  използвано  второ  устройство , като например  гравиметричен  
филтър  или поглътител  с въвеждаща  тръбичка  (импинджер )/ 
барботиращ  апарат , за да се потвърди  ефикасността  на пробовземането  
на основния  инструмент . Масовата  концентрация , получена  чрез анализ  
на размера  на частиците , следва  да бъде  в рамките  на разумни  граници  
от масовата  концентрация , получена  чрез анализ  с филтруване  [вж. GD 
39 (2)]. В случай  че тяхната  равностойност  може  да бъде  доказана  в 
ранния  етап на изследването , могат  да не се извършват  допълнителни  
измервания  за потвърждение . От съображения  за хуманно  отношение  
към животните  следва  да се вземат  мерки  за свеждане  до минимум  на 
недостатъчните  за формулиране  на заключение  данни , които  могат  да 
доведат  до необходимост  от повтаряне  на дадена  експозиция . 
Определяне  на размера  на частиците  трябва  да бъде  извършено  за 
пари , ако съществува  вероятност  кондензация  на парите  да доведе  до 
образуване  на аерозол , или ако бъдат  открити  частици  в атмосфера  от 
пари  с потенциал  за смесени  фази  (вж. точка  15).  
ПРОЦЕДУРА  
26. По-долу  са описани  два вида  изследвания : традиционният  протокол  и 
протоколът  C × t. И двата  протокола  могат  да включват  зрително  
изследване , основно  изследване , и/или изпитване  при пределна  конце­  
нтрация  (традиционен  протокол ), или изпитване  при максимална  
пределна  концентрация  (C × t). Ако е известно , че единият  пол е по- 
възприемчив , ръководителят  на изследването  може  да избере  тези 
изследвания  да бъдат  извършени  само  с използване  на по- 
възприемчивия  пол. Ако експозиция  на вид гризач , различен  от плъх , 
е само  през носа , максималната  продължителност  на експозицията  
може  да бъде  адаптирана  така, че да се минимизира  специфичният  за 
този вид дистрес . Преди  започване  на изследването  следва  да бъдат  
разгледани  всички  достъпни  данни , за да се сведе  до минимум  
използването  на животни . Например  данни , получени  с използването  
на глава  Б.52. от настоящото  приложение  (4), могат  да премахнат  необ­  
ходимостта  от зрителни  изследвания , и могат  също  така да покажат  
дали  единият  пол е по-възприемчив  [вж. GD 39 (2)].  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 222
 
ТРАДИЦИОНЕН  ПРОТОКОЛ  
Общи  съображения : Традиционен  протокол  
27. При традиционното  изследване  групи  животни  се експонират  на изпитван  
химикал  за определен  период  от време  (обичайно  4 часа) в камера  за 
експозиция  само  през носа , или в камера  за експозиция  на цялото  тяло. 
Животните  се експонират  или на максимална  пределна  концентрация  (изп­  
итване  при пределна  концентрация ), или най-малко  на три концентрации  
чрез прилагане  на поетапна  процедура  (основно  изследване ). Основното  
изследване  може  да бъде  предшествано  от зрително  изследване , освен  ако 
са достъпни  някакви  данни  за изпитвания  химикал , като например  
предходно  изследване  по глава  Б.52. [вж. GD 39 (2)].  
Зрително  изследване : Традиционен  протокол  
28. Зрителното  изследване  се използва  за изчисляване  на ефикасността  на 
изпитвания  химикал , за установяване  на евентуални  разлики  във 
възприемчивостта  между  половете  и за подпомагане  при избора  на 
равнищата  на експозиционна  концентрация  за основното  изследване  
или изпитване  при пределна  концентрация . При избора  на равнища  на 
концентрация  за зрителното  изследване  следва  да се използва  цялата  
достъпна  информация , включително  достъпни  данни  за (количествена ) 
зависимост  структура -активност  и данните  за подобни  химикали . Не 
повече  от три мъжки  и три женски  екземпляра  следва  да бъдат  
експонирани  на всяка  концентрация  (възможно  е да са необходими  3 
животни /пол, за да се установи  евентуална  разлика , свързана  с половете ). 
Дадено  зрително  изследване  може  да се състои  от една -единствена  
концентрация , но ако е необходимо  могат  да бъдат  изпитани  повече  
концентрации . При зрителното  изследване  не следва  да се изпитват  
голям  брой  животни  и концентрации  по такъв  начин , че същото  да 
наподобява  основно  изследване . Вместо  зрително  изследване  може  да 
се използва  предходно  изследване  по глава  Б.52. (4) [ вж. GD 39 (2)].  
Изпитване  при пределна  концентрация : Традиционен  протокол  
29. Изпитване  при пределна  концентрация  се използва , когато  се знае или 
се очаква  изпитваният  химикал  да бъде  практически  нетоксичен , т.е. 
предизвикващ  токсичен  отговор  само  над нормативно  определената  
пределна  концентрация . При изпитване  при пределна  концентрация  
единствена  група  от три мъжки  и три женски  екземпляра  се 
експонира  на изпитвания  химикал  на максимална  пределна  конце­  
нтрация . Информация  за токсичността  на изпитвания  химикал  може  
да бъде  получена  от познания  за подобни  изпитани  химикали , като 
се вземат  предвид  идентичността  и процентното  съдържание  на 
компонентите , за които  е известно , че са с токсикологично  значение . 
В случаите , когато  има малко  или няма  информация  за неговата  токс­  
ичност , или при които  се очаква  изпитваният  химикал  да бъде  
токсичен , следва  да се провежда  основното  изследване . 
30. Изборът  на пределните  концентрации  обикновено  зависи  от регулаторни  
изисквания . При прилагане  на Регламент  (ЕО) № 1272/2008 максималните  
пределни  концентрации  за газове , пари , и аерозоли  са съответно  20 000 
ppm, 20 mg/l и 5 mg/l (или максимално  достижимата  концентрация ) (3). 
Генерирането  на максимални  пределни  концентрации  за някои  изпитвани  
химикали , особено  под формата  на пари  и аерозоли , може  да бъде  
предизвикателство  от техническа  гледна  точка . При изпитване  на 
аерозоли  основната  цел следва  да бъде  постигането  на размер  на част­  
иците , позволяващ  вдишването  им (MMAD от 1—4 μm). Това  е 
възможно  за повечето  изпитвани  химикали  при концентрация  от 2 mg/l. 
Изпитване  на аерозоли  при концентрация  по-висока  от 2 mg/l следва  да се 
извършва  само  ако може  да бъде  постигнат  размер  на частиците , 
позволяващ  вдишването  им [вж. GD 39 (2)]. Регламент  (ЕО) 
№ 1272/2008 не насърчава  изпитвания  с концентрация , превишаваща  
пределната  концентрация  от съображения  за хуманно  отношение  към 
животните  (3). Пределната  концентрация  следва  да бъде  взета  предвид  
само , когато  има голяма  вероятност  резултатите  от такова  изпитване  да 
имат  пряко  практическо  значение  за опазване  здравето  на хората  (3) и 
следва  да бъде  представена  обосновка  в доклада  от изследването . В 
случай  на потенциално  взривоопасни  изпитвани  химикали  следва  да се 
положат  усилия  за избягване  на условия , предразполагащи  експлозия . С 
оглед  избягване  на ненужно  използване  на животни  следва  да се извърши  
изпитване  без животни  преди  изпитването  при пределна  концентрация , за 
да се гарантира , че в камерата  могат  да бъдат  постигнати  условията  за 
изпитването  при пределна  концентрация . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 223
 
31. Ако при пределна  концентрация  се наблюдава  смъртност  или 
терминално  състояние , резултатите  от изпитването  при пределна  конце­  
нтрация  могат  да послужат  като зрително  изследване  за по-нататъшно  
изпитване  при други  концентрации  (вж. основното  изследване ). Ако 
поради  физични  или химични  свойства  на изпитвания  химикал  е невъ­  
зможно  да бъде  постигната  пределна  концентрация , на изпитване  
трябва  да бъде  подложена  максимално  достижимата  концентрация . В 
случай , че при максимално  достижимата  концентрация  достигнатата  
леталност  е по-малка  от 50 %, не е необходимо  по-нататъшно  
изпитване . Ако пределната  концентрация  не е била  достигната , в 
доклада  от изследването  следва  да се съдържа  обяснение  и подкрепящи  
данни . Ако максимално  достижимата  концентрация  на пари  не 
предизвиква  токсичност , може  да се наложи  изпитваният  химикал  да 
бъде  генериран  като течен  аерозол . 
Основно  изследване : Традиционен  протокол  
32. Основното  изследване  обичайно  се извършва , като се използват  пет 
мъжки  и пет женски  екземпляра  (или 5 животни  от по-възприемчивия  
пол, ако е известен ) за равнище  на концентрация , с най-малко  три 
равнища  на концентрация . Следва  да се използват  достатъчни  
равнища  на концентрация , за да се постигне  устойчив  статистически  
анализ . Времевият  интервал  между  групите  за експозиция  се определя  
от първоначалното  появяване  на токсичните  признаци  и от тяхната  
продължителност  и сила . Експонирането  на животните  на следващото  
равнище  на концентрация  следва  да бъде  забавено , докато  се получи  
достатъчна  увереност  за преживяемост  на изпитваните  преди  това 
животни . Това  позволява  на ръководителя  на изследването  да 
адаптира  целевата  концентрация  за следващата  група  за експозиция . 
Поради  зависимостта  от сложни  технологии  това може  да не е 
винаги  практично  при изследвания  по инхалаторен  път, поради  което  
експозицията  на животни  на следващото  равнище  на концентрация  
следва  да се основава  на предходно  придобит  опит  и научна  
преценка . При изпитването  на смеси  следва  да бъде  консултиран  
източник  GD 39 (2).  
ПРОТОКОЛ  ЗА КОНЦЕНТРАЦИЯ  × ВРЕМЕ  (C × T)  
Общи  съображения : Протокол  C × t  
33. Поетапното  изследване  C × t може  да бъде  разглеждано  като 
алтернатива  на традиционния  протокол  при оценка  на инхалаторната  
токсичност  (12) (13) (14). Този  подход  позволява  животните  да бъдат  
експонира  на изпитван  химикал  на няколко  равнища  на концентрация  и 
с множество  различни  продължителности . Всички  изпитвания  се 
извършват  в камера  за експозиция  само  през носа  (камерите  за 
експозиция  на цялото  тяло  не са практични  за настоящия  протокол ). 
Настоящият  протокол  е илюстриран  в технологична  диаграма  в 
допълнение  1. Чрез  симулационен  анализ  е установено , че и при 
традиционния  протокол , и при протокола  C × t могат  да бъдат  
получени  устойчиви  стойности  за LC  50 , но по принцип  протоколът  C 
× t е по-ефективен  при получаване  на устойчиви  стойности  за LC  01 и 
LC 10 (15).  
34. Чрез  симулационен  анализ  е доказано , че използването  на две животни  
на интервал  C × t (по едно  от всеки  един  от двата  пола , или две от по- 
възприемчивия  пол) може  по принцип  да е подходящо  при изпитването  
на 4 концентрации  и 5 продължителности  на експозицията  при основно  
изследване . При някои  обстоятелства  ръководителят  на изследването  
може  да избере  да използва  два плъха  от пол за интервал  C × t (15). 
Използването  на 2 животни  от пол за концентрация  и времева  точка  
може  да намали  изместването  и варирането  на оценките , да увеличи  
процента  на сбъдване  на оценките  и да разшири  доверителния  
интервал . Въпреки  това, при стойност , която  не е достатъчно  близка  
до данните  за оценка  (когато  се използва  по едно  животно  от всеки  пол 
или две животни  от по-възприемчивия  пол), е възможно  5-а експоз­  
иционна  концентрация  също  да е достатъчна . Допълнителни  указания  
относно  броя  на животните  и концентрациите , които  да се използват  в 
изследване  C × t, могат  да бъдат  намерени  в GD 39 (2).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 224
 
Зрително  изследване : Протокол  C × t  
35. Зрителното  изследване  се използва  за изчисляване  на ефикасността  на 
изпитвания  химикал  и за подпомагане  при избора  на равнищата  на 
експозиционна  концентрация  за основното  изследване . За избор  на 
подходяща  начална  концентрация  за основното  изследване  и за 
свеждане  до минимум  броя  на използваните  животни  може  да бъде  
необходимо  зрително  изследване , при което  се използват  до три 
животни  от пол на концентрация  [за подробна  информация  вж. 
допълнение  III от GD 39 (2)]. Може  да се наложи  да се използват  
три животни  от пол, за да се установи  разлика  по отношение  на 
половете . Тези  животни  трябва  да бъдат  експонирани  с единична  
продължителност , обичайно  240 минути . Възможността  за генериране  
на подходяща  атмосфера  за изпитване  следва  да бъде  оценена  по време  
на предварителни  технически  изпитвания  без животни . По принцип  не 
е необходимо  извършване  на зрително  изследване , ако са достъпни  
данни  за смъртността  от изследване  по Б.52. (4). При избора  на първон­  
ачалната  целева  концентрация  в изследване  по Б.2. ръководителят  на 
изследването  следва  да разгледа  наблюдаваните  модели  на смъртността  
във всяко  достъпно  изследване  по Б.52. (4) за двата  пола  и при всички  
изпитани  концентрации  [вж. GD (2)].  
Първоначална  концентрация : Протокол  C × t  
36. Първоначалната  концентрация  (сесия  I от експозицията ) (допълнение  1) 
ще е или пределна  концентрация , или концентрация , избрана  от ръко­  
водителя  на изследването  въз основа  на зрителното  изследване . Групи  
от 1 животно /пол се експонират  на тази концентрация  за многократни  
продължителности  (например  15, 30, 60, 120 или 240 минути ), като в 
резултат  се получава  общ брой  от 10 животни  (т.нар. сесия  I от експоз­  
ицията ) (допълнение  1). 
37. Изборът  на пределните  концентрации  обикновено  зависи  от регул­  
аторни  изисквания . При прилагане  на Регламент  (ЕО) № 1272/2008 
максималните  пределни  концентрации  за газове , пари , и аерозоли  са 
съответно  20 000 ppm, 20 mg/l и 5 mg/l ( или максимално  достижимата  
концентрация ) (3). Генерирането  на максимални  пределни  конце­  
нтрации  за някои  изпитвани  химикали , особено  под формата  на пари  
и аерозоли , може  да бъде  предизвикателство  от техническа  гледна  
точка . При изпитване  на аерозоли  целта  следва  да бъде  постигането  
на размер  на частиците , позволяващ  вдишването  им (т.е. MMAD от 
1—4 μm) при пределна  концентрация  от 2 mg/l. Това  е възможно  при 
повечето  изпитвани  химикали . Изпитване  на аерозоли  при конце­  
нтрация  по-висока  от 2 mg/l следва  да се извършва  само  ако може  да 
бъде  постигнат  размер  на частиците , позволяващ  вдишването  им [вж. 
GD 39 (2)]. Регламент  (ЕО) № 1272/2008 не насърчава  изпитвания  с 
концентрация , превишаваща  пределната  концентрация , от съображения  
за хуманно  отношение  към животните  (3). Изпитване  с концентрация , 
превишаваща  пределната  концентрация , следва  да бъде  взето  предвид  
само  когато  има голяма  вероятност  резултатите  от такова  изпитване  да 
имат  пряко  практическо  значение  за опазване  здравето  на хората  (3) и 
следва  да бъде  представена  обосновка  в доклада  от изследването . В 
случай  на потенциално  взривоопасни  изпитвани  химикали  следва  да 
се положат  усилия  за избягване  на условия , предразполагащи  
експлозия . С оглед  избягване  на ненужно  използване  на животни  
следва  да се извърши  изпитване  без животни  преди  изпитването  при 
първоначална  концентрация , за да се гарантира , че в камерата  могат  да 
бъдат  постигнати  условията  при тази концентрация . 
38. Ако при първоначална  концентрация  се наблюдава  смъртност  или 
терминално  състояние , резултатите  от изпитването  при посочената  
концентрация  могат  да послужат  като начална  точка  за по-нататъшно  
изпитване  при други  концентрации  (вж. основното  изследване ). Ако 
поради  физични  или химични  свойства  на изпитвания  химикал  е невъ­  
зможно  да бъде  постигната  пределна  концентрация , на изпитване  
трябва  да бъде  подложена  максимално  достижимата  концентрация . В 
случай , че при максимално  достижимата  концентрация  достигнатата  
леталност  е по-малка  от 50 %, не е необходимо  по-нататъшно  
изпитване . Ако пределната  концентрация  не може  да бъде  достигната , 
в доклада  от изследването  следва  да се съдържа  обяснение  и 
подкрепящи  данни . Ако максимално  достижимата  концентрация  на 
пари  не предизвиква  токсичност , може  да се наложи  изпитваният  
химикал  да бъде  генериран  като течен  аерозол . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 225
 
Основно  изследване : Протокол  C × t  
39. Първоначалната  концентрация  (сесия  I от експозицията ) (допълнение  
1), изпитвана  при основното  изследване , ще е или пределна  конце­  
нтрация , или концентрация , избрана  от ръководителя  на изследването  
въз основа  на зрителното  изследване . Ако по време  на или след  сесия  I 
на експозицията  е наблюдавана  смъртност , минималната  експозиция  (C 
× t), в резултат  на която  е наблюдавана  смъртност , се взема  като 
насочваща  за установяване  на концентрацията  и продължителностите  
при сесия  II на експозицията . Всяка  последваща  сесия  на експозицията  
зависи  от предходната  сесия  (вж. допълнение  1). 
40. За много  от изпитваните  химикали  резултатите , получени  при първон­  
ачалната  концентрация , заедно  с три допълнителни  сесии  на 
експозиция  с по-малка  стъпка  при графичното  изобразяване  на 
времето  (т.е. определяне  на последователните  периоди  на експозиция  
чрез геометрична  прогресия  с частно , обичайно  равно  на √2), ще бъде  
достатъчно , за да се установи  връзката  със смъртността  преи  C × t (15), 
но може  да има известна  полза  да се използва  5-а експозиционна  
концентрация  [вж. Допълнение  1 и GD 39 (2)]. За математическа  
обработка  на резултатите  за протокол  C × t вж. допълнение  1. 
НАБЛЮДЕНИЯ  
41. Върху  животните  трябва  да бъдат  извършвани  чести  клинични  набл­  
юдения  по време  на периода  на експозиция . След  експозицията  
клинични  наблюдения  следва  да бъдат  извършвани  най-малко  два 
пъти  в деня  на експозицията , или по-често , ако има показания  от 
отговора  на животните  на третирането , и най-малко  един  път дневно  
след  това общо  в продължение  на 14 дни. Продължителността  на 
периода  на наблюдение  не е фиксирана , но следва  да се определя  от 
характера  и времето  на поява  на клиничните  признаци  и от продължит­  
елността  на възстановителния  период . Моментите  във времето , в които  
признаците  на токсичност  се появяват  и изчезват , са важни , особено  
ако съществува  тенденция  към забавяне  появата  на признаците  на токс­  
ичност . Всички  наблюдения  систематично  се записват  с индивидуални  
архиви , които  се поддържат  за всяко  животно . Животните , намерени  в 
терминално  състояние , и животните , показващи  признаци  на силна  
болка  и/или продължителни  признаци  на силен  дистрес , следва  да 
бъдат  умъртвени  по хуманен  начин  по причини , свързани  с 
хуманното  отношение  към животните . При провеждането  на 
изследвания  за клинични  признаци  на токсичност  трябва  да се 
внимава  първоначално  трудно  забележимите  и преходните  
респираторни  промени  в резултат  от процедурата  по експозицията  да 
не бъдат  взети  взети  погрешно  за токсичност , свързана  с изпитвания  
химикал , което  би изисквало  преждевременно  умъртвяване  на 
животните . Следва  да бъдат  взети  предвид  принципите  и критериите , 
обобщени  в Ръководството  за хуманен  край  (GD 19) (7). Когато  
животните  са умъртвени  по хуманни  причини  или са намерени  
мъртви , времето  на смъртта  им следва  да бъде  записано  колкото  е 
възможно  по-точно . 
42. Наблюденията  в клетките  следва  да включват  изменения  в кожата  и 
козината , очите  и лигавиците , също  и в дихателната , кръвоносната , 
автономната  и централната  нервна  система , както  и в соматомоторната  
активност  и поведението  на животните . Всякакво  разграничение  между  
локални  и системни  ефекти  трябва  да бъде  отбелязвано , когато  е 
възможно . Вниманието  следва  да бъде  насочено  към наблюдения  на 
треперене , конвулсии , слюноотделяне , диария , летаргия , сън и кома . 
Измерването  на ректална  температура  може  да предостави  подкрепящи  
доказателства  за рефлекторно  забавено  дишане  или хипотермия / 
хипертермия , свързани  с третирането  или затвореното  пространство . 
Телесно  тегло  
43. Индивидуалното  тегло  на животните  следва  да бъде  записвано  веднъж  
през периода  на аклиматизация , в деня  на експозицията  преди  
експозиция  (ден 0), и най-малко  през дни 1, 3 и 7 (и след  това един  
път седмично ), и към момента  на настъпване  на смъртта  или евта­  
назията , ако е след  ден 1. Телесното  тегло  е признато  като изключ­  
ително  важен  показател  за токсичност  и следователно  животни , 
проявяващи  устойчиво  снижаване  с > 20 % в сравнение  със стой­  
ностите  от предварителното  изследване , трябва  да бъдат  стриктно  набл­  
юдавани . В края  на периода  след  експозицията  преживелите  животни  
се претеглят  и след  това се умъртвяват  по хуманен  начин . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 226
 
Патология  
44. Всички  изпитвани  животни , включително  умрелите  по време  на 
изпитването  или подложените  на евтаназия  и извадени  от изследването  
поради  причини , свързани  с хуманното  отношение  към животните , 
следва  да бъдат  подложени  на макроскопска  аутопсия . Ако аутопсията  
не може  да се извърши  веднага  след  откриването  на мъртвото  животно , 
трупът  на животното  трябва  да бъде  охладен  (но не замразен ) при 
температури , достатъчно  ниски  за да бъде  сведена  до минимум  
автолизата . Аутопсията  следва  да се извърши  във възможно  най- 
кратък  срок , обичайно  в рамките  на един  или два дни. Следва  да 
бъдат  записани  всички  макроскопски  патологични  изменения  за всяко  
животно , като се обърне  особено  внимание  на всякакви  изменения  в 
дихателните  пътища . 
45. С оглед  увеличаване  на стойността  за интерпретиране  на изследването  
могат  да бъдат  разгледани  допълнителни  изследвания , включени  a 
priori  по план , като например  измерване  на теглото  на белите  
дробове  на преживелите  плъхове  и/или осигуряване , чрез 
микроскопско  изследване  на дихателните  пътища , на доказателства  за 
дразнене . Изследваните  органи  могат  да включват  и тези, които  
представят  доказателство  за макроскопска  патология  при животните , 
преживели  24 часа или повече , както  и органите , за които  е известно  
или се очаква  да бъдат  засегнати . Микроскопското  изследване  на целия  
респираторен  тракт  може  да предостави  полезна  информация  за 
изпитвани  химикали , които  реагират  с вода , такива  като киселини  и 
хигроскопични  изпитвани  химикали . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
46. Следва  да бъдат  посочени  индивидуални  данни  за животните  относно  
тяхното  телесно  тегло  и находките  при аутопсията . Данните  от клин­  
ичните  наблюдения  следва  да бъдат  обобщени  в таблична  форма , 
показваща  за всяка  от изпитваните  групи  броя  на използваните  
животни , броя  на животните , проявяващи  специфични  признаци  за 
токсичност , броя  на животните , намерени  мъртви  по време  на 
изпитването  или умъртвени  по хуманни  причини , времето  на 
настъпване  на смъртта  на отделните  животни , описание  и изменение  
във времето  на токсичните  ефекти  и обратимостта  им, както  и 
находките  при аутопсията . 
Доклад  от изпитването  
47. Докладът  от изпитването  по целесъобразност  следва  да включва  
следната  информация : 
Изпитвани  животни  и отглеждане  
— описание  на условията  в клетките , включително : брой  (или промяна  
в броя ) на животните  в една  клетка , материал  за постилане , 
температура  и относителна  влажност  на околната  среда , продължит­  
елност  на излагане  на светлина  и идентифициране  на хранителния  
режим , 
— използван  вид/порода  и обосновка  за използване  за видове , 
различни  от плъх , 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— метод  на случаен  подбор , 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  тип на хранителния  режим /източник , водоизточник ), 
— описание  на всякакво  кондициониране  преди  изпитването , включ­  
ително  хранителен  режим , карантина  и лечение  на заболявания ; ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 227
 
Изпитван  химикал  
— физична  природа , чистота  и, където  е относимо , физични  и 
химични  свойства  (включително  изомеризация ), 
— идентификационни  данни  и номер  съгласно  химичния  регистър  на 
Службата  за химични  индекси  (CAS), ако са известни ; 
Носител  
— обосновка  за използването  на носител  и обосновка  за избора  на 
носителя  (ако е различен  от вода ), 
— данни  за минали  периоди  или паралелни  данни , доказващи  че 
носителят  не пречи  на резултата  от изследването ; 
Инхалационна  камера  
— описание  на инхалационната  камера , включително  размери  и обем , 
— източник  и описание  на оборудването , използвано  за експозицията  
на животните , както  и за генерирането  на атмосферата , 
— оборудване  за измерване  на температурата , относителната  
влажност , размера  на частиците  и действителната  концентрация , 
— източник  на въздух  и обработка  на доставяния /извличания  въздух  и 
система , използвана  за кондициониране , 
— използвани  методи  за калибриране  на оборудването  за гарантиране  
на хомогенна  атмосфера  за изпитване , 
— разлика  в налягането  (положителна  или отрицателна ), 
— отвори  за експозиция  за всяка  камера  (експозиция  само  през носа ); 
местоположение  на животните  в системата  (експозиция  на цялото  
тяло ), 
— хомогенност /устойчивост  във времето  на атмосферата  за изпитване , 
— разположение  на датчиците  за температура  и относителна  влажност  
и пробовземане  на атмосферата  за изпитване  в камерата , 
— скорости  на въздушния  поток , скорост  на въздушния  поток  при 
отвор  за експозиция  (експозиция  само  през носа ) или брой  
животни  на камера  (експозиция  на цялото  тяло ), 
— информация  за оборудването , използвано  за измерване  на кислород  
и въглероден  диоксид , ако е приложимо , 
— време , необходимо  за достигане  на уравновесяване  на инхалац­  
ионната  камера  (t 95 ), 
— брой  изменения  на обема  на час, 
— измервателни  прибори  (ако е приложимо ); 
Данни  за експозицията  
— обосновка  за избора  на целева  концентрация  в основното  
изследване , 
— номинални  концентрации  (обща  маса  на изпитвания  химикал , 
генерирана  в инхалационната  камера , разделена  на преминалия  
през камерата  обем  въздух ), 
— действителни  концентрации  на изпитвания  химикал , взети  от зоната  
на дишане  на животните ; за смеси , които  произвеждат  хетерогенни  
физични  форми  (газове , пари , аерозоли ), всяка  от тези форми  може  
да бъде  анализирана  отделно , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 228
 
— всички  концентрации  във въздуха  следва  да се докладват  в единици  
за масова  концентрация  (напр . mg/l, mg/m  3 и т.н.); единици  за 
отношение  на обем  (напр . ppm, ppb и др.) също  могат  да бъдат  
докладвани  в скоби , 
— разпределение  на частиците  по размер , аеродинамичен  диаметър  
при медианата  на масата  на частиците  (MMAD) и геометрично  
стандартно  отклонение  (σ g ), включително  методите  за изчис­  
ляването  им. Отделните  анализи  на размерите  на частиците  следва  
да бъдат  докладвани ; 
Условия  на изпитването  
— подробна  информация  за приготвянето  на изпитвания  химикал , 
включително  подробна  информация  за всякакви  процедури , 
използвани  за намаляване  на размера  на частиците  на твърди  
материали  или за приготвяне  на разтвори  на изпитвания  химикал . 
В случаите , когато  механични  процеси  може  да са променили  
състава  на изпитван  химикал , следва  да се включат  резултатите  от 
анализите  за проверка  на състава  на изпитвания  химикал , 
— описание  (за предпочитане  включващо  схема ) на оборудването , 
използвано  за генериране  на атмосферата  за изпитване  и за 
експозиция  на животните  на атмосферата  за изпитване , 
— подробни  данни  за използвания  метод  за анализ  на химикала  и за 
валидирането  на метода  (включително  и ефикасността  на добива  на 
изпитвания  химикал  от матрицата  на пробата ), 
— обосновката  за избора  на концентрациите  за изпитване ; 
Резултати  
— таблично  представяне  на данните  за температурата , относителната  
влажност  и въздушния  поток  в камерата , 
— таблично  представяне  на данните  за номиналната  и действителната  
концентрация  в камерата , 
— таблично  представяне  на данните  за размера  на частиците , включ­  
ително  аналитични  данни  за пробовземането , за разпределението  на 
частиците  по размери , и изчисления  на MMAD и σ g , 
— таблично  представяне  на данните  за отговора  и на равнището  на 
концентрацията  за всяко  животно  (т.е. животни , показващи  
признаци  на токсичност , включително  смъртност , природа , сила , 
време  на настъпване  и продължителност  на ефектите ), 
— данни  за индивидуалното  телесно  тегло  на животните , събрани  по 
време  на изследването ; дата и време  на смъртта  ако е преди  
насрочената  евтаназия , изменение  във времето  от настъпването  на 
признаци  за токсичност  и дали  са били  обратими  за всяко  животно , 
— находки  от аутопсията  и хистопатологични  находки  за всяко  
животно , ако има такива , 
— оценки  за леталността  (напр . LC  50 , LD  01 ), включително  95 %-ен 
доверителен  интервал  и наклон  на крива  (ако се предоставят  от 
метода  за оценка ), 
— статистическо  отношение , включително  оценка  за експонент  n 
(протокол  C × t). Следва  да бъде  предоставено  наименованието  на 
използвания  статистически  софтуер ; ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 229
 
Дискусия  и интерпретиране  на резултатите  
— особено  внимание  следва  да се обърне  на описанието  на методите , 
използвани  за спазване  на критериите  на настоящия  метод  за 
изпитване , например  пределната  концентрация , или размера  на 
частиците , 
— в контекста  на цялостните  констатации  следва  да бъде  разгледан  
въпросът  дали  частиците  могат  да бъдат  вдишвани , особено  ако 
не е било  възможно  спазването  на критериите  за размер  на част­  
иците , 
— трябва  да се даде  обосновка , ако е имало  необходимост  от 
умъртвяване  по хуманен  начин  на животни , изпитващи  болка  или 
показващи  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , въз основа  
на критериите  в Ръководството  на ОИСР  за хуманен  край  (8), 
— ако изпитването  по глава  Б.52. от настоящото  приложение  (4) е 
било  преустановено  в полза  на настоящия  метод  Б.2., следва  да 
бъде  предоставена  обосновка , 
— съгласуваността  на методите , използвани  за определяне  на номин­  
алните  и действителните  концентрации , както  и отношението  на 
действителната  концентрация  към номиналната  концентрация , 
трябва  да бъдат  включени  в общата  оценка  на изследването , 
— следва  да бъдат  разгледани  вероятната  причина  за смъртта  и прео­  
бладаващият  начин  на действие  (системно  срещу  локално ). 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (2009). Acute Inhalation Toxicity Testing. OECD Guideline for 
Testing of Chemicals № 403, OECD, Paris. Available at: [http:// 
www.oecd.org/env/testguidelines]  
(2) OECD (2009). Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing. 
Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and 
Assessment № 39, OECD, Paris. Available at: [http://www.oecd.org/env/ 
testguidelines]  
(3) Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  парламент  и на Съвета  
от 16 декември  2008 година  относно  класифицирането , етикетирането  
и опаковането  на вещества  и смеси , за изменение  и за отмяна  на 
директиви  67/548/ЕИО  и 1999/45/ ЕО и за изменение  на Регламент  
(ЕО) № 1907/2006 ( ОВ L 353, 31.12.2008 г., стр. 1). 
(4) Глава  Б.52. от настоящото  приложение , остра  инхалаторна  токсичност  
— метод  клас остра  токсичност . 
(5) Глава  Б.40. от настоящото  приложение , In vitro кожна  корозия : 
Транскутанно  измерване  на електрическото  съпротивление  (TER).  
(6) Глава  Б.40А. от настоящото  приложение , In vitro кожна  корозия : 
Изпитване  върху  модел  на човешка  кожа . 
(7) OECD (2005), In Vitro Membrane Barrier Test Method For Skin 
Corrosion. OECD Guideline for Testing of Chemicals № 435, OECD, 
Paris. Available at: [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(8) OECD (2000). Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals 
Used in Safety Evaluation. Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 19, OECD, Paris. Available at: 
[http://www.oecd.org/env/testguidelines]
 
(9) SOT (1992). Technical Committee of the Inhalation Specialty Section, 
Society of Toxicology (SOT). Recommendations for the Conduct of 
Acute Inhalation Limit Tests. Fund. Appl. Toxicol. 18: 321-327.  
(10) Phalen RF (2009). Inhalation Studies: Foundations and Techniques. (2nd 
Edition) Informa Healthcare, New York.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 230
 
(11) Pauluhn J and Thiel A (2007). A Simple Approach to Validation of 
Directed-Flow Nose-Only Inhalation Chambers. J. Appl. Toxicol. 27: 
160-167.  
(12) Zwart JHE, Arts JM, ten Berge WF, Appelman LM (1992). Alternative 
Acute Inhalation Toxicity Testing by Determination of the 
Concentration-Time-Mortality Relationship: Experimental Comparison 
with Standard LC50 Testing. Reg. Toxicol. Pharmacol. 15: 278-290.  
(13) Zwart JHE, Arts JM, Klokman-Houweling ED, Schoen ED (1990). Deter ­
mination of Concentration-Time-Mortality Relationships to Replace LC50 
Values. Inhal. Toxicol. 2: 105-117.  
(14) Ten Berge WF and Zwart A (1989). More Efficient Use of Animals in 
Acute Inhalation Toxicity Testing. J. Haz. Mat. 21: 65-71.  
(15) OECD (2009). Performance Assessment: Comparison of 403 and C × t 
Protocols via Simulation and for Selected Real Data Sets. Environmental 
Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 104, 
OECD, Paris. Available at: [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(16) Finney DJ (1977). Probit Analysis, 3rd ed. Cambridge University Press, 
London/New York.  
ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  на 
настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 231
 
Допълнение  1 
Протокол  C × t  
1. Поетапното  изследване  C × t може  да бъде  разглеждано  като 
алтернатива  на традиционния  протокол  при оценка  на инхалаторната  
токсичност  (12) (13) (14). То следва  да се извършва  преференциално  
когато  е налице  специфична  регулаторна  или научна  необходимост , 
която  изисква  изпитване  на животни  с различна  продължителност , 
като например  за планиране  на ответни  действия  при извънредни  
ситуации  или за планиране  на земеползването . Този  подход  обикновено  
започва  с изпитване  на пределна  концентрация  (сесия  I на експоз­  
ицията ), при което  животните  са експонирани  на изпитван  химикал  
за пет продължителности  (например  15, 30, 60, 120 и 240 минути ), 
така че в рамките  на една  сесия  на експозиция  да се съдържат  
множество  продължителности  (вж. фигура  1). При прилагане  на 
Регламент  (ЕО) № 1272/2008 максималните  пределни  концентрации  
за газове , пари  и аерозоли  са съответно  20 000 ppm, 20 mg/l и 5 mg/l. 
Тези  равнища  могат  да бъдат  надвишавани  само  ако е налице  регул­  
аторна  или научна  необходимост  от изпитване  на тези равнища  (вж. 
точка  37 в основния  текст  на Б.2). 
2. При ситуации , при които  има малко  или няма  информация  за токсич­  
ността  на изпитвания  химикал , следва  да бъде  извършено  зрително  
изследване , при което  групи  от не повече  от 3 животни  от пол са 
експонирани  на целеви  концентрации , избрани  от ръководителя  на 
изследването , обичайно  за 240 min.  
3. Ако по време  на сесия  I от експозицията  е извършено  изпитване  при 
дадена  пределна  концентрация  и е наблюдавана  смъртност  под 50 %, 
не е необходимо  допълнително  изпитване . Ако е налице  регулаторна  
или научна  необходимост  за установяване  на взаимовръзка  конце­  
нтрация /време /отговор  на равнища , по-високи  от посочената  пределна  
концентрация , следващата  експозиция  следва  да се извършва  на по- 
високо  равнище , като например  двукратно  по-висока  от пределната  
концентрация  (т.е. 2 L на фигура  1). 
4. Ако се наблюдава  токсичност  при пределната  концентрация , необ­  
ходимо  е допълнително  изпитване  (основно  изследване ). Тези  допълн­  
ителни  експозиции  се провеждат  или при по-ниски  концентрации  (във 
фигура  1: сесии  II, III или IV’ от експозицията ) или при по-високи  
концентрации , като се използва  по-кратка  продължителност  (във 
фигура  1: сесия  IV от експозицията ), като се използват  продължит­  
елности , които  са адаптирани  и не са разположени  на толкова  голямо  
отстояние  във времето  една  от друга . 
5. Изпитването  (първоначална  концентрация  и допълнителни  конце­  
нтрации ) се извършва  с използване  на 1 животно  от всеки  пол за 
концентрация /времева  точка , или с 2 животни  от по-възприемчивия  
пол за концентрация /времева  точка . При някои  обстоятелства  ръковод­  
ителят  на изследването  може  да избере  да използва  2 плъха  от всеки  
пол за концентрация /времева  точка  (или 4 животни  от по- 
възприемчивия  пол за концентрация /времева  точка ) (15). Използването  
на 2 животни  от всеки  пол за концентрация /времева  точка  обичайно  
намалява  изместването  и варирането  на оценките , увеличава  процента  
на сбъдване  на оценките  и разширява  доверителния  интервал  по 
отношение  на описания  тук протокол . Повече  подробна  информация  
е предоставена  в GD 39 (2).  
6. В идеалния  случай  всяка  сесия  от експозицията  се провежда  в рамките  
на един  ден. Това  дава възможност  за забавяне  на следващата  
експозиция , докато  се получи  достатъчна  увереност  по отношение  на 
преживяемостта , и позволява  на ръководителя  на изследването  да 
адаптира  целевата  концентрация  и продължителностите  за следващата  
сесия  от експозицията . Препоръчва  се всяка  сесия  от експозицията  да 
започва  с групата , която  ще бъде  експонирана  най-дълго , напр . групата , 
експонирана  240 минути , след  това групата , експонирана  120 минути  и 
т.н. Ако например  животни  от групата , експонирана  240 минути , 
умират  след  90 минути  или показват  силни  признаци  на токсичност  
(например  крайни  промени  в начина  на дишане , като например  
задух ), не би имало  смисъл  да бъде  експонирана  група  в продължение  
на 120 минути , тъй като смъртността  по всяка  вероятност  ще бъде  
100 %. По този начин  ръководителят  на изследването  трябва  да 
избере  по-кратки  продължителности  на експозицията  за тази конце­  
нтрация  (т.е. 90, 65, 45, 33 и 25 минути ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 232
 
7. Концентрацията  в камерата  трябва  да се измерва  често  за определяне  
на средно  претеглена  по време  концентрация  за всяка  продължителност  
на експозицията . Когато  е възможно , времето  на смъртта  на всяко  
животно  (а не продължителността  на експозицията ) следва  да се 
използва  в статистическия  анализ . 
8. Резултатите  от първите  четири  сесии  от експозицията  следва  да бъдат  
изследвани , за да се определи  евентуална  липса  на данни  в кривата  на 
концентрацията  във времето  (вж. фигура  1). В случай  на недостатъчно  
съответствие  може  да бъде  извършена  допълнителна  експозиция  (5-а 
концентрация ). Концентрацията  и продължителностите  на експозицията  
за 5-ата експозиция  следва  да бъдат  избрани  така, че да запълнят  тази 
липса . 
9. Всички  сесии  от експозицията  (включително  първата  сесия  от експоз­  
ицията ) ще бъдат  използвани  за изчисляването  на взаимовръзката  
концентрация /време /отговор  с използването  на статистически  анализ  
(16). Ако е възможно , за всеки  интервал  C × t следва  да бъдат  
използвани  средно  претеглената  във времето  концентрация  и продълж­  
ителността  на експозицията  до настъпването  на смъртта  (ако смъртта  
настъпи  по време  на експозицията ). 
Фигура  1 
Хипотетична  илюстрация  на взаимовръзката  концентрация /време / 
смъртност  при плъхове
  
Незапълнени  символи  = преживели ; запълнени  символи  = умрели  
животни  
Триъгълници  = животни  от женски  пол; окръжности  = животни  от 
мъжки  пол 
Непрекъсната  линия  = стойности  на LC  50 (обхват  7,5—240 min) за 
животни  от мъжки  пол с n = 1  
Прекъсната  линия  = стойности  на LC  50 (обхват  7,5—240 min) за 
животни  от женски  пол с n = 1  
Пунктирани  линии  = хипотетични  стойности  за LC  50 за животни  от 
мъжки  и женски  пол, ако n беше  равен  на 2 (12).  
Терминологичен  справочник  
Концентрация : 
Време  на експозиция : ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 233
 
10. По-долу  е даден  пример  за поетапната  процедура : 
Сесия  I от експозицията  — Изпитване  при пределната  
концентрация  (вж. фигура  1) 
— 1 животно  от всеки  пол за концентрация /времева  точка ; общо  10 
животни  ( a ) 
— Целева  концентрация  ( б ) 
— Експонират  се пет групи  животни  на тази целева  концентрация  за 
продължителности  съответно  от 15, 30, 60, 120 и 240 минути . 
↓ 
Сесия  II от експозицията  ( в ) — Основно  изследване  
— 1 животно  от всеки  пол за концентрация /времева  точка ; общо  10 
животни . 
— Експонират  се пет групи  животни  при по-ниска  концентрация  ( г ) 
(1/2 L, където  L е пределната  концентрация ) с малко  по-продълж­  
ителни  експозиции  (разположени  с отстояние  във времето , 
определено  от геометрична  прогресия  с частно  √2; вж. фигура  1). 
↓ 
Сесия  III от експозицията  — Основно  изследване  
— 1 животно  от всеки  пол за концентрация /времева  точка ; общо  10 
животни . 
— Експонират  се пет групи  животни  при по-ниска  концентрация  ( г ) 
(1/4 L) с малко  по-продължителни  експозиции  (разположени  с 
отстояние  във времето , определено  от геометрична  прогресия  с 
частно  √2; вж. фигура  1). 
↓ 
Сесия  IV′ от експозицията  — Основно  изследване  
— 1 животно  от всеки  пол за концентрация /времева  точка ; общо  10 
животни . 
— Експонират  се пет групи  животни  при по-ниска  концентрация  ( г ) (1/8 
L) с малко  по-продължителни  експозиции  (разположени  с отстояние  
във времето , определено  от геометрична  прогресия  с частно  √2; вж. 
фигура  1). 
↓ или ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 234  
( a ) Ако не е налична  информация , отнасяща  се за възприемчивост  по полове , се 
използват  плъхове  от двата  пола , т.е. по 1 животно  от всеки  пол за концентрация . 
Въз основа  на съществуваща  информация , или ако стане  ясно  по време  на тази 
сесия  от експозицията , че единият  от половете  е по-възприемчив , се използват  10 
животни  от по-възприемчивия  пол (2 животни  за концентрация /времева  точка ) за 
всяко  равнище  на концентрация  по време  на последователните  изпитвания . 
( б ) При прилагане  на Регламент  (ЕО) № 1272/2008 максималните  пределни  конце­  
нтрации  за газове , пари  и аерозоли  са съответно  20 000 ppm, 20 mg/l и 5 mg/l. В 
случай  на очаквана  токсичност  или въз основа  на резултатите  от зрителното  
изследване  следва  да бъдат  избирани  по-ниски  начални  концентрации . В случай  
на регулаторна  или научна  необходимост  могат  да бъдат  използвани  по-високи  
концентрации . = пределна  концентрация . 
( в ) В идеалния  случай  експонирането  на животните  на следващото  равнище  на конце­  
нтрация  следва  да бъде  забавено , докато  се получи  достатъчна  увереност  за 
преживяемост  на третираните  преди  това животни . Това  позволява  на ръководителя  
на изследването  да адаптира  целевата  концентрация  и продължителностите  за 
следващата  сесия  от експозицията . 
( г ) Минималната  доза (концентрация  × време ), която  е довела  до смъртност  по време  на 
изпитването  при първоначална  концентрация  (първа  сесия  от експозицията ) се взема  
като указание  за установяване  на следващата  комбинация  от концентрация  и продълж­  
ителности  на експозицията . Обикновено  концентрацията  бива  двукратно  намалявана  
(1/2 от L) и животните  се експонират  в нов времеви  обхват  с по-фина  стъпка  с периоди  
на експозиция , разположени  с отстояние  във времето , определено  от геометрична  
прогресия  с частно  1,4 (√2; вж. препратка  11) около  времето  съгласно  равнището  на 
минималната  смъртоносна  доза (време  х концентрация ), наблюдавано  през първата  
експозиция . В тази фигура  (фигура  1) смъртността  при сесия  I от експозицията  е 
установена  за първи  път на 15 мин.; продължителностите  по време  на сесия  II следов­  
ателно  са разположени  около  30 min и са 15, 21, 30, 42 и 60 минути . След  първите  две 
експозиции  настойчиво  се препоръчва  данните  да бъдат  представени  във фигура , 
подобна  на представената  по-горе, и да се провери  дали  кривата  на взаимовръзката  
между  концентрация  и времето  е под ъгъл  45 градуса  (n = 1) или ако взаимовръзката  
концентрация /време /отговор  е с по-малък  наклон  (напр . n = 2) или с по-голям  такъв  
(напр . n = 0,8). В последните  случаи  настойчиво  се препоръчва  следващите  конце­  
нтрации  и продължителности  да бъдат  адаптирани  по съответен  начин .
 Сесия  IV от експозицията  — Основно  изследване  
— 1 животно  от всеки  пол за концентрация /времева  точка ; общо  10 
животни . 
— Експонират  се пет групи  животни  при по-висока  концентрация  ( д ) 
(2 L) с малко  по-краткотрайни  експозиции  (разположени  с 
отстояние  във времето , определено  от геометрична  прогресия  с 
частно  √2; вж. фигура  1). 
Математическа  обработка  на резултатите  от протокол  C × t  
11. Процедура  C × t с 4 или 5 концентрации  на експозиция  и пет продъ­  
лжителности  дава съответно  20 или 25 точки  с данни . С тези точки  с 
данни  взаимовръзката  C × t може  да бъде  изчислена  с използване  на 
статистически  анализ  (16):  
Уравнение  1: 
ProbitðPÞ ¼ b 0 þ b 1 ln C þ b 2 ln t 
където  C = концентрация ; t = продължителност  на експозицията , или 
Уравнение  2: 
Отговор ¼ ƒðC n tÞ 
където  n ¼ b 1=b 2: 
С помощта  на уравнение  1 стойността  на LC  50 може  да бъде  изчислена  
за даден  период  от време  (например  4 часа, 1 час, 30 минути  или 
всякакъв  друг  период  от време  в рамките  на диапазона  на периодите  
от време  на изпитване ), при P = 5 (50 % отговор ). Отбележете , че 
правилото  на Хабер  се прилага  само  при n = 1. Стойността  на LC  01 
може  да бъде  изчислена  при P = 2,67.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 235  
( д ) В някои  случаи  може  да е необходимо  да се увеличи  концентрацията  (2 пъти  L) за 
нов обхват  от време  с още по-фина  стъпка  с периоди  на експозиция , разположени  с 
отстояние  във времето , определено  от геометрична  прогресия  с частно  1,4 (√2) 
около  времето  съгласно  минималното  смъртоносно  равнище  на концентрация , 
наблюдавано  през  първата  експозиция . За предпочитане  е минималната  продължит­  
елност  на експозицията  да е над 5 минути ; максималната  продължителност  на 
експозицията  не следва  да надвишава  8 часа.
 Б.3. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  (ДЕРМАЛНА ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  А. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество  в нарастващи  дози  се нанася  върху  
кожата  при няколко  групи  експериментални  животни , като за 
всяка  група  се използва  по една  доза. След  това се провеждат  
наблюдения  върху  вредните  ефекти  и смъртните  случаи . 
Животните , умрели  по време  на изпитването , се подлагат  на 
аутопсия . Оцелелите  животни  се аутопсират  в края  на 
изпитването . 
Животните  с остри  и продължителни  симптоми  на болка  и стрес  
може  да се наложи  да бъдат  убити  по безболезнен  начин . Не 
бива  да се прилага  дозиране  на изследваните  вещества  по 
начини , за които  е известно , че причиняват  силна  болка  и 
стрес , поради  характерни  за тях ефекти  на разяждане  или 
силно  дразнене . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Подготовка  
Животните  се разполагат  по клетки  и се държат  и хранят  в 
експериментални  условия  най-малко  пет дни преди  началото  
на експеримента . Преди  изпитването  млади , полово  зрели  
животни  в добро  здравословно  състояние  се подбират  по 
произволен  начин  и се разпределят  на групи . Приблизително  
24 часа преди  опита  козината  по гръбната  (дорзалната ) част на 
тялото  се отстранява  чрез подрязване  или бръснене . Следва  да 
се внимава  да не се охлузи  кожата , защото  това би могло  да 
промени  нейната  пропускливост . За прилагането  на изпитваното  
вещество  е необходимо  да се почистят  най-малко  10 % от 
повърхността  на тялото . При изпитването  на твърди  вещества  
(които  може  да се приведат  в прахообразно  състояние ) 
веществото  следва  добре  да се омокри  с вода  или, ако е необ­  
ходимо , с подходящ  носител , за да се осигури  добър  контакт  с 
кожата . Ако се използва  носител , следва  да се има предвид  
неговото  влияние  върху  проникването  на веществото  през 
кожата . По принцип  течните  вещества  се прилагат  без 
разреждане . 
1.6.2.  Условия  на изпитването  
1.6.2.1.  Опитни  животни  
Могат  да се използват  плъхове  или зайци  в зряла  възраст . 
Възможно  е използването  и на други  видове  животни , но за 
това е необходима  обосновка . Използват  се обикновените  
лабораторни  породи . Вариациите  в телесната  маса  на 
животните  в началото  на изпитването  не бива  да надвишават  ± 
20 % от съответната  средна  стойност  за всеки  от двата  пола . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 236
 
1.6.2.2.  Брой  и пол 
При всяко  ниво  на дозиране  се използват  най-малко  пет 
животни . Всички  те следва  да са от един  и същи  пол. 
Женските  не бива  да са раждали , както  и да не са бременни . 
Ако има информация , че един  от двата  пола  проявява  знач­  
ително  по-висока  чувствителност , то се използват  животни  от 
този пол. 
Забележка : При изследванията  за остра  токсичност  с животни  
от по-висш  разред  от гризачите , следва  да се обмисли  
употребата  на по-малък  брой  животни . Дозите  следва  да се 
подбират  внимателно , като се полагат  усилия  да не се 
надвишават  умерено  токсичните  дози . При тези изпитвания  се 
избягва  прилагането  на летални  дози  от веществото . 
1.6.2.3.  Нива  на дозите  
Те следва  да са достатъчно  на брой  (поне  три) и да са правилно  
разпределени  количествено , така че при изпитването  да се 
получат  групи  от животни  с определен  обхват  от токсични  
ефекти  и нива  на смъртност . При определянето  на нивата  на 
дозите  следва  да се вземат  под внимание  всички  ефекти  на 
дразнене  и разяждане  на кожата . Данните  следва  да са дост­  
атъчни  за получаването  на крива  доза/отговор  и, когато  е 
възможно , да позволяват  приемливо  определяне  на LD  50 . 
1.6.2.4  .Гранично  изпитване  
С помощта  на описаните  по-горе процедури  може  да се проведе  
гранично  изпитване  с една  доза на ниво  най-малко  2 000 mg/ кg 
телесна  маса  върху  група  от 5 мъжки  и 5 женски  животни . Ако 
това доведе  до смъртност , свързана  със съединението , може  да 
се реши  провеждане  на пълното  изследване . 
1.6.2.5.  Период  на наблюдение  
Периодът  на наблюдение  следва  да бъде  най-малко  14 дни. 
Продължителността  на наблюдението  обаче  не бива  да се 
фиксира  точно . Тя се определя  от реакциите  на токсичното  
въздействие , скоростта , с която  те настъпват , и времетраенето  
на възстановителния  период . Така  тя може  да се удължи , 
докогато  се сметне  за необходимо . Времето , за което  се 
появяват  и изчезват  симптомите  на токсичното  действие , 
тяхната  продължителност  и моментът  на смъртта  са важни , 
особено  когато  съществува  тенденция  към забавяне  на 
смъртния  изход . 
1.6.3.  Процедура  
Животните  се разполагат  по клетки  индивидуално . Изпитваното  
вещество  се нанася  равномерно  върху  площ  около  10 % от 
общата  повърхност  на тялото . При силно  токсичните  вещества  
покритата  повърхност  от тялото  може  да бъде  и по-малка , но 
при всички  случаи  покриването  следва  да стане  на колкото  е 
възможно  по-тънък  и равномерен  пласт . 
Изпитваните  вещества  се поддържат  в контакт  с кожата  с 
помощта  на марлена  превръзка  и лепенки , които  не 
предизвикват  дразнене . Времетраенето  на експозицията  е 24 
часа. Мястото  на прилагане  следва  да се покрие  допълнително  
по подходящ  начин , така че марлята  и веществото  да са добре  
закрепени  и да се избегне  възможността  животното  да погълне  
веществото . За тази цел може  да се използват  приспособления  за 
ограничаване  на движенията , но пълното  обездвижване  на 
животното  не е препоръчително . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 237
 
В края  на експозиционния  период  останалото  вещество  се 
отстранява , като кожата  се почиства  с вода  (ако е възможно ) 
или по друг  подходящ  начин . 
Наблюденията  се записват  системно  в реда , в който  са 
направени . За всяко  животно  се води  индивидуален  протокол . 
През  първия  ден наблюденията  се провеждат  често . Поне  
веднъж  на всеки  работен  ден се прави  обстоен  клиничен  
преглед . Останалите  наблюдения  се провеждат  ежедневно , като 
се прави  всичко  възможно  загубата  на животни  да бъде  сведена  
до минимум , например  аутопсия  или замразяване  на животните , 
намерени  мъртви , и изолиране  или умъртвяване  на слабите  или 
умиращите  животни . 
Наблюденията  следва  да включват : промени  в козината , 
третираната  кожа , очите  и лигавиците , както  и на дихателната , 
кръвоносната , автономната  и централната  нервна  система , 
соматомоторната  активност  и поведението  на животните . 
Особено  внимание  следва  да се обръща  за тремори , конвулсии , 
слюноотделяне , диария , летаргия , сън и кома . Времето  на 
смъртта  се записва  колкото  е възможно  по-точно . Животните , 
умрели  по време  на изпитването , както  и оцелелите  до края  на 
изпитването  се подлагат  на аутопсия . Записват  се всички  
видими  патологични  изменения . Когато  е необходимо , някои  
тъкани  се вземат  за хистопатологично  изследване . 
Оценка  на токсичното  действие  при другия  пол 
След  приключването  на опита  с единия  пол група  от най-малко  
пет животни  от другия  пол също  се подлага  на третиране . Така  
може  да се разбере  дали  животните  от този пол не са 
забележимо  по-чувствителни  към изпитваното  вещество . В 
отделни  случаи  е оправдано  използването  на по-малък  брой  
животни . Когато  има адекватна  информация , показваща , че 
животните  от изследвания  пол са много  по-чувствителни , то 
експериментирането  с другия  пол може  и да не се прави . 
2. ДАННИ  
Данните  се обобщават  в табличен  вид като за всяка  група  
животни  се показват : брой  на животните  в началото  на 
изпитването , време  на смъртта  на всяко  животно  поотделно , 
брой  животни  с други  признаци  на токсично  въздействие , 
описание  на тосичните  ефекти  и находките  при аутопсията . 
Индивидуалните  телесни  маси  на животните  се определят  и 
записват  непосредствено  преди  прилагането  на изпитваното  
вещество , по един  път на седмица  след  това и при смъртта . 
Когато  времето  на преживяване  е по-голямо  от един  ден, 
измененията  в теглото  на животните  се изчисляват  и записват . 
Животните , убити  по хуманни  съображения  заради  стреса  и 
болката , свързани  с въздействието  на веществото , се отчитат  
като случаи  на смърт , причинена  от веществото . Стойността  
на LD  50 следва  да се определи  по утвърдения  метод . 
Оценката  на данните  следва  да включва  преценка  на завис­  
имостта  (ако има такава ) между  експозицията  на животните  и 
появата  и остротата  на всички  аномалии , включително  в 
поведението  и клиничните  аномалии , видимите  поражения , 
промените  в телесната  маса , смъртността  и всички  останали  
токсикологични  ефекти . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  следва  по възможност  да съдържа  
следната  информация : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 238
 
— вид, порода , източник , условия  на средата , диета  и т.н.; 
— условия  на изпитването  (включително  метод  за почистване  
на кожата  и вид на превръзката : оклузивна  (запушваща ) или 
неоклузивна ); 
— нива  на дозите  (с носителите , ако са използвани , и конце­  
нтрациите ); 
— пол на третираните  животни ; 
— таблични  данни  за отговора  по пол и ниво  на дозата  (т.е. 
брой  на животните , умрели  или убити  по време  на опита ; 
брой  на животните  със симптоми  на токсично  действие ; общ 
брой  на животните ); 
— време  на смъртта  след  дозирането ; причини  и критерии  за 
умъртвяването  на животни  по хуманни  съображения ; 
— всички  наблюдения ; 
— стойност  на LD  50 за пола , подложен  на цялостно  изследване , 
определена  на четиринадесетия  ден, и метод  на определянето  ѝ; 
— 95 % интервал  на достоверност  за LD  50 (където  може  да се 
предостави ); 
— крива  доза/смъртност  и наклон  на кривата  (където  методът  
позволява  да се определи ); 
— находки  при аутопсията ; 
— всички  хистопатологични  находки ; 
— резултатите  от всички  направени  изпитвания  върху  другия  
пол; 
— обсъждане  на резултатите  (особено  внимание  се обръща  на 
ефекта , който  умъртвяването  на животните  по хуманни  
съображения  по време  на изпитването  оказва  върху  изчис­  
лената  стойност  на LD  50 ); 
— интерпретиране  на резултатите . 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  Г. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  Д. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 239
 
Б.4. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ : КОЖНО  ДРАЗНЕЩО /КОРОЗИВНО  
ДЕЙСТВИЕ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на метод  ОECD ТG 404 (2002).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
При подготовката  на този осъвременен  метод  специално  
внимание  беше  обърнато  на възможностите  за усъвършенстване  
във връзка  с осигуряване  хуманно  отношение  към опитните  
животни  и с цялостната  оценка  на съществуващата  информация  
за изпитваното  вещество  с цел избягване  на ненужно  изпитване  
върху  опитни  животни . При този метод  се препоръчва , преди  да 
се пристъпи  към теста  in vivo  за оценка  на корозивно /дразнещо  
действие  на веществото , да се извърши  анализ  на 
съществуващите  данни  за химичното  вещество , които  имат  
отношение  към това действие . Когато  липсват  достатъчно  
данни , те могат  да се получат  чрез извършване  на последващо  
проучване  (1). Стратегията  на изследване  включва  извършване  
на валидирани  и утвърдени  изследвания  in vitro  и е представена  
като приложение  към този метод . Освен  това се препоръчва , 
когато  е възможно , при първоначалното  изследване  in vivo  
веществото  да се прилага  на животното  в трите  тестови  
апликации  последователно , а не едновременно . 
За целите  и на научната  стойност  на проучването , и на 
хуманното  отношение  към животните  следва  да не се 
пристъпва  към изпитване  in vivo , преди  да бъдат  анализирани  
и оценени  всички  налични  данни  във връзка  с потенциалното  
корозивно /дразнещо  действие  на веществото  върху  кожата . Тези  
данни  включват  доказателства  от съществуващи  проучвания  
върху  хора  и/или лабораторни  животни , сведения  за корозивно /­ 
дразнещо  действие  на едно  или повече  вещества  с подобен  
химичен  строеж  или смеси  от такива  вещества , данните  за 
висока  киселинност  или алкалност  на веществото  (2)(3), както  
и резултатите  от валидирани  и утвърдени  изследвания  in vivo  
или ех vivo  (4)(5)(5 а). Този  анализ  следва  да доведе  до 
намаляване  на необходимостта  от извършване  на изследвания  
in vivo  за оценка  на дразнещо /корозивно  действие  на веществата  
върху  кожата , за които  вече съществуват  достатъчно  данни  от 
други  проучвания  относно  тези ефекти . 
Като  приложение  към този метод  е изложена  препоръчителна  
стратегия  за последователно  изпитване , която  включва  
извършването  на валидирани  и утвърдени  in vitro  или ех vivo  
изпитвания  за оценка  на корозивно /дразнещо  действие . Страт­  
егията  е разработена  и единодушно  препоръчана  от участниците  
в семинар  на ОECD (6) и е приета  като препоръчителна  
стратегия  за изпитване  в рамките  на Глобалната  система  за 
хармонизиране  на класификацията  на химични  вещества  (GНS) 
(7). Препоръчва  се тази стратегия  да бъде  приложена , преди  да 
се предприеме  in vivo  изпитване . За нови  вещества  стратегията  
представлява  препоръчителният  подход  за поетапно  изпитване  с 
цел получаване  на достоверни  научни  данни  за корозивното  или 
дразнещото  действие  на веществото . За съществуващи  вещества  
с недостатъчно  данни  за корозивно /дразнещо  действие  върху  
кожата  стратегията  следва  да се прилага , когато  се провеждат  
проучвания , за да се получат  липсващите  данни . Използването  
на друга  стратегия  или процедура  за изпитване  или решението  
да не се прилага  поетапен  подход  за изпитване  следва  да бъдат  
обосновани . 
Когато  оценката  за корозивно /дразнещо  действие  не може  да 
бъде  извършена  чрез анализ  на данните  в съответствие  със 
стратегията  за последователно  изпитване , следва  да се 
пристъпи  към in vivo  изпитване  (вж. приложението ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 240
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Кожно  дразнене  е предизвикването  на обратимо  увреждане  на 
кожата  след  прилагането  на дадено  химично  вещество  за период  
до 4 часа. 
Корозивно  действие  върху  кожата  е предизвикването  на 
необратимо  увреждане  на кожата , а именно  видима  некроза  на 
епидермиса  и дермата  след  прилагането  на дадено  химично  
вещество  за период  до 4 часа. Характерните  прояви  на 
корозивно  действие  включват  язви, кървене , а до края  на 14- 
дневния  период  на наблюдение  се появяват  промени  в цвета  
на кожата , области  с пълна  алопеция  и цикатрикси . При 
съмнение  за вида  на увреждането  следва  да се извърши  хист­  
опатологично  изследване . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество  се прилага  еднократно  върху  кожата  на 
опитно  животно . Участък  от кожата  на животното , който  не е 
третиран , служи  като контрола . През  определени  интервали  от 
време  се отчита  и оценява  степента  на дразнещо /корозивно  
действие . Наблюдаваните  ефекти  се описват  подробно , за да 
може  да се извърши  цялостната  им оценка . Продължителността  
на наблюдението  следва  да бъде  достатъчно  голяма , за да може  
да се установи  дали  ефектите  са обратими  или не. 
Животните , които  показват  трайни  признаци  на тежък  стрес  
и/или болка , следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  начин  и 
тези ефекти  да се вземат  под внимание  при оценката  на 
веществото . Критериите  за вземане  на решение  за умъртвяване  
по хуманен  начин  на животните , които  изпитват  тежко  
страдание  и са в терминално  състояние , са посочени  в 
препратка  (8). 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.4.1.  Подготовка  на in vivo  изпитването  
1.4.1.1.  Избор  на вида  опитни  животни  
Предпочитаният  вид опитни  животни  са зайците  албиноси . 
Използват  се млади , здрави , полово  зрели  животни . 
Използването  на други  животински  видове  следва  да бъде  обос­  
новано . 
1.4.1.2.  Подготовка  на животните  
Приблизително  24 часа преди  изпитването  козината  от 
дорзалната  част на тялото  на животните  се отстранява  чрез 
подстригване  или бръснене . При подстригването  или бръсненето  
кожата  не следва  да се охлузва . Използват  се само  животни  без 
наранявания  или заболявания  на кожата . 
В козината  на някои  породи  зайци  има гъсто  окосмени  
участъци , които  са по-забележими  през определени  периоди  от 
годината . Изпитваните  вещества  следва  да не се прилагат  върху  
участъците  с гъсто  окосмяване . 
1.4.1.3.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Животните  следва  да бъдат  разпределени  в отделни  клетки . В 
помещението  на зайците  следва  да се поддържа  температура  
20 o С (±3  o С). Стойностите  на относителната  влажност  не 
следва  да бъдат  по-ниски  от 30 % и е желателно  да не 
превишават  70 % освен  при почистване  на помещението . 
Целта  следва  да бъде  относителната  влажност  да се поддържа  
в интервала  50—60 %. Осветлението  следва  да бъде  изкуствено , 
като се редуват  12 часа светлина  и 12 часа тъмнина . При 
храненето  се прилагат  обичайните  лабораторни  диети  с 
неограничен  достъп  до питейна  вода . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 241
 
1.4.2.  Процедура  на изпитването  
1.4.2.1.  Прилагане  на изпитваното  вещество  
Изпитваното  вещество  се нанася  върху  малък  участък  от кожата  
(около  6 cm) и се покрива  с марля . Марлята  се прикрепва  с 
помощта  на лепенка , която  не предизвиква  дразнене  на кожата . 
Когато  не е възможно  директно  третиране  (напр . при течности  
или някои  пастообразни  вещества ), изпитваното  вещество  се 
нанася  първо  върху  марлята , след което  марлята  се поставя  върху  
кожата . През  периода  на експозиция  марлята  следва  да се задържи  в 
контакт  с кожата , без да е притисната  силно , с помощта  на 
подходяща  полуоклузивна  превръзка . Когато  изпитваното  
вещество  се нанася  върху  марлята , тя следва  да бъде  прикрепена  
към кожата  по такъв  начин , че да се осигури  плътен  контакт  и 
равномерно  разпределение  на веществото  върху  третирания  
участък . Достъпът  на животното  до марлята  и поглъщането  или 
вдишването  на изпитваното  вещество  следва  да бъде  предотвратен . 
Течните  вещества  най-често  се използват , без да се разреждат . 
Когато  се изпитва  твърдо  вещество  (което  може  да се стрие  на 
прах , ако това е необходимо ), то следва  да се навлажни  с 
възможно  най-малкото  количество  вода  (или, при нужда , друг  
подходящ  носител ), което  е достатъчно , за да се постигне  
плътен  контакт  с кожата . Когато  се използва  друг  носител  
освен  водата , той следва  да не оказва  влияние  върху  кожното  
дразнене , предизвикано  от изпитваното  вещество , или влиянието  
му следва  да бъде  минимално . 
В края  на периода  на експозиция  (обикновено  4 часа) остатъкът  
от веществото  се отстранява  от кожата , когато  това е възможно , 
с вода  или подходящ  разтворител , без да се променя  видът  на 
кожната  реакция  или да се нарушава  целостта  на епидермиса . 
1.4.2.2.  Дози  
Върху  кожния  участък  се нанасят  0,5 ml от течни  химични  
вещества  или 0,5 g от твърди  или пастообразни  химични  
вещества . 
1.4.2.3.  Първоначално  изпитване  (in vivo изпитване  за дразнещо /­ 
корозивно  действие  върху  кожата  с използване  на едно  
опитно  животно ). 
Препоръчва  се in vivo  изпитването  да се извърши  първоначално  
върху  едно  опитно  животно , особено  в случаите , когато  се 
предполага , че веществото  проявява  корозивно  действие . Този  
подход  е в съответствие  със стратегията  за последователно  
изпитване  (вж. приложение  1). 
Когато  въз основа  на анализа  на съществуващите  данни  се 
прецени , че веществото  проявява  корозивно  действие , не е необ­  
ходимо  по-нататък  то да се изпитва  върху  лабораторни  животни . 
За повечето  химични  вещества , за които  се предполага , че са 
корозивни , най-често  не е необходимо  да се извършва  in vivo  
изпитване . Въпреки  това в случаите , когато  се прецени , че са 
необходими  допълнителни  данни  поради  недостатъчни  доказат­  
елства , може  да се извърши  изпитване  върху  животни  в 
ограничен  обем , като се използва  следният  подход : веществото  
се прилага  върху  едно  и също  животно  последователно  до 3 
пъти . Първия  път превръзката  и марлята  се отстраняват  след  
три минути . Ако не се наблюдава  значителна  кожна  реакция , 
веществото  се прилага  втори  път за един  час. Ако наблюденията  
на този етап показват , че експозицията  може  да продължи  4 
часа, като се спази  принципът  за хуманно  отношение  към 
животните , веществото  се нанася  трети  път за четири  часа, 
след  което  се оценява  степента  на реакцията . 
Когато  след  една  от трите  последователни  апликации  се открие  
корозивен  ефект , изпитването  се прекратява  веднага . Когато  
след  нито  една  от апликациите  не се наблюдава  корозивен  
ефект , опитното  животно  се проследява  в продължение  на 14 
дни, освен  ако на по-ранен  етап не се появят  корозивни  
промени . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 242
 
В случаите , когато  не се очаква  изпитваното  вещество  да прояви  
корозивно  действие , но може  да предизвика  дразнене , третирането  
се провежда  върху  едно  животно  с една  апликация  за четири  часа. 
1.4.2.4.  Потвърдително  изпитване  (in vivo изпитване  за кожно  
дразнещо  действие  с използване  на допълнителни  опитни  
животни ). 
Когато  при първоначалното  изпитване  не се установява  корозивен  
ефект , наблюдаваните  прояви  на дразнене  или отрицателната  
реакция  следва  да бъдат  потвърдени , като се извърши  еднократно  
третиране  на най-много  две допълнителни  животни  за 4 часа. Ако 
при първоначалното  изпитване  са отчетени  прояви  на дразнене , 
потвърдителното  изпитване  може  да се извърши  последователно  с 
използване  на едно  или две опитни  животни  или едновременно  
върху  двете  опитни  животни . Когато  по изключение  не е 
проведено  първоначално  изпитване , могат  да се третират  две или 
три животни , като на всяко  животни  се прави  по една  апликация  за 
4 часа. Когато  се използват  две животни  и при двете  се наблюдава  
една  и съща  реакция , не е необходимо  по-нататъшно  продължаване  
на изпитването . В обратния  случай  се третира  и трето  допълн­  
ително  животно . При получаване  на противоречиви  резултати  
може  да се наложи  използването  на още допълнителни  животни . 
1.4.2.5.  Период  на наблюдение  
Продължителността  на периода  на наблюдение  следва  да бъде  
достатъчна  за пълната  оценка  на обратимостта  на наблюдаваните  
ефекти . Въпреки  това изпитването  следва  да се прекрати  във всеки  
момент , когато  животните  покажат  трайни  признаци  на силна  
болка  или стрес . Обикновено  за да се установи  дали  ефектите  са 
обратими , животните  се наблюдават  в продължение  на 14 дни след  
прекратяване  на експозицията . Ако преди  края  на 14-дневния  
период  се установи , че промените  са обратими , изпитването  се 
прекратява  в момента , когато  това е установено . 
1.4.2.6.  Клинични  наблюдения  и оценка  на кожните  реакции  
Всички  животни  се преглеждат  за признаци  на еритема  и едем  и 
реакциите  се оценяват  60 минути , а след  това 24, 48 и 72 часа 
след  прекратяването  на експозицията . При първоначалното  
изпитване  върху  едно  животно  третираният  участък  се 
преглежда  и веднага  след  отстраняването  на превръзката  и 
марлята . Кожните  промени  се класифицират  и отчитат  според  
скалата , дадена  в таблица  1. Когато  до 72-рия час не може  да се 
определи  дали  настъпилото  увреждане  на кожата  е проява  на 
дразнещо  или корозивно  действие , наблюдението  продължава  
до 14-ия ден, за да се оцени  дали  промените  са обратими . 
Освен  признаците  на дразнене  следва  да се опишат  подробно  
и всички  локални  токсични  прояви  (напр . изсушаване  на 
кожата ) и системни  неблагоприятни  ефекти  (напр . клинични  
симптоми  на отравяне , промени  в телесната  маса ). Когато  е 
необходимо  да се изяснят  противоречиви  резултати , следва  да 
се използва  хистопатологично  изследване . 
Класифицирането  на кожните  промени  е субективен  процес . За 
да се постигне  съответствие  в оценките  при класифицирането  на 
кожните  промени  и да се подпомогнат  лабораториите , в които  
се провеждат  изпитвания , и лицата , които  наблюдават  
животните  и оценяват  намерените  промени , персоналът , 
извършващ  наблюдението , е необходимо  да бъде  добре  обучен  
да прилага  класификационната  скала  (вж. таблицата  по-долу ). 
Може  да се използва  и илюстрирано  ръководство  за класиф­  
ициране  на проявите  на кожно  дразнене  и други  увреждания  (9). 
2. ДАННИ  
2.1. ПРЕДСТАВЯНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
В отчета  за изпитването  получените  резултати  следва  да се 
обобщят  в табличен  вид. Той следва  да включва  всички  данни , 
посочени  в точка  3.1. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 243
 
2.2. ОЦЕНКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Баловата  оценка  на кожното  дразнене  следва  да се разглежда  
във връзка  с вида , тежестта  и обратимостта  или необратимостта  
на уврежданията . Индивидуалната  балова  оценка  не е 
единственият  критерий  за определяне  на дразнещите  свойства  
на изпитваното  вещество , тъй като се оценяват  и други  ефекти  
на веществото . Вместо  това индивидуалният  бал следва  да се 
разглежда  като стойност , която  се оценява  съвместно  с всички  
други  наблюдения  от проучването . 
При оценката  на дразнещия  ефект  следва  да се има предвид  
дали  кожните  увреждания  са обратими  или не. Когато  
промени  като алопеция  (в ограничени  участъци ), хиперкератоза , 
хиперплазия  и излющване  на кожата  се задържат  до края  на 14- 
дневния  период  на наблюдение , изпитваното  вещество  следва  да 
се класифицира  като дразнещо . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ОТЧЕТ  ЗА ИЗПИТВАНЕТО  
Отчетът  за изпитването  следва  да включва  следната  
информация : 
Обосновка  за провеждане  на in vivo  изпитване : резултати  от 
анализа  на съществуващите  данни , включително  резултатите  от 
прилагането  на стратегията  за последователно  изпитване : 
— описание  на съответните  данни  от предишни  изпитвания ; 
— данни , получени  при всеки  етап от стратегията  за изпитване ; 
— описание  на извършените  in vitro  изпитвания , включително  
подробно  представяне  на процедурите  на изпитване  и 
резултатите  за изпитваните  и референтните  химични  
вещества ; 
— анализ  на съществуващите  данни  с оглед  преценка  на необ­  
ходимостта  от извършване  на in vivo  проучване . 
Изпитвано  вещество : 
— данни  за идентифициране  на химичното  вещество  (напр . 
CAS номер , източник , чистота , известни  примеси , номер  на 
партидата ); 
— физична  природа  и физикохимични  свойства  (напр . рН, 
летливост , разтворимост , стабилност ); 
— при изпитване  на смеси  се представят  данни  за качествения  
състав  на сместа  и процентното  съдържание  на 
компонентите  ѝ. 
Носител  (ексципиент ): 
— химично  идентифициране , концентрация  (където  е необ­  
ходимо ), използван  обем ; 
— обосновка  за избора  на носителя . 
Опитни  животни : 
— използван  вид/порода , обосновка  за използване  на други  
животински  видове /породи  освен  зайци  албиноси ; 
— брой  на животните  от всеки  пол; 
— индивидуална  телесна  маса  на всяко  животно  в началото  и в 
края  на изпитването ; 
— възраст  на животните  в началото  на проучването ; 
— източник  за доставка  на животните , условия  на отглеждане , 
диета  и т.н. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 244
 
Условия  на изпитването : 
— начин  за подготовка  на кожния  участък  за третиране ; 
— описание  на материалите , използвани  при апликацията  на 
веществото  и приготвянето  на превръзката , и на начина  на 
поставяне  на превръзката ; 
— описание  на подготовката  на изпитваното  вещество  за 
нанасяне  и на нанасянето  и отстраняването  му. 
Резултати : 
— таблица  с баловите  оценки  на проявите  на дразнещо /­ 
корозивно  действие  за всяко  животно  във всички  моменти  
на отчитане ; 
— описание  на всички  наблюдавани  увреждания ; 
— описание  в разказна  форма  на вида  и степента  на наблюда­  
ваните  прояви  на дразнене /корозивно  действие , както  и на 
хистопатологичните  заключения ; 
— описание  на други  неблагоприятни  локални  (напр . 
отстраняване  на мазнините  на кожата ) и системни  ефекти  
освен  проявите  на кожно  дразнене  и корозивно  действие . 
Обсъждане  на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Barratt, M. D., Castell, J. V., Chamberlain, M., Combes, R. D., 
Dearden, J. C., Fentem, J. H., Gerner, I., Giuliani, A., Gray, T. 
J. B., Livingston, D. J., Provan, W. M., Rutten, F. A. J. J. L., Verhaar, H. J. M., Zbinden, P. (1995) The Integrated Use of Alternative Approaches for Predicting Toxic Hazard. ECVAM 
Workshop Report 8. ATLA 23, 410—429.
 
(2) Young, J. R., How, M. J., Walker, A. P., Worth W. M. H. 
(1988) Classification as Corrosive or Irritant to Skin of Prepa ­
rations Containing Acidic or Alkaline Substance Without Testing on Animals. Toxicol.  In Vitro,  2, 19—26.
 
(3) Worth, A. P., Fentem, J. H., Balls, M., Botham, P. A., Curren, 
R. D., Earl, L. K., Esdaile, D. J., Liebsch, M. (1998) 
Evaluation of the proposed OECD Testing Strategy for skin corrosion. ATLA 26, 709—720.
 
(4) ECETOC (1990) Monograph №.15, „Skin Irritation“, European 
Chemical Industry, Ecology and Toxicology Centre, Brussels.  
(5) Fentem, J. H., Archer, G. E. B., Balls, M., Botham, P. A., 
Curren, R. D., Earl, L. K., Esdaile, D. J., Holzhutter, H. G. 
and Liebsch, M. (1998) The ECVAM international validation study on in vitro tests for skin corrosivity. 2.Results and evaluation by the Management Team. Toxicology in Vitro 
12, pp.483—524.
 
(5a) Testing Method B.40 Skin Corrosion.  
(6) OECD (1996) OECD Test Guidelines Programme: Final 
Report of the OECD Workshop on Harmonization of Vali ­
dation and Acceptance Criteria for Alternative Toxicological Test Methods. Held in Solna, Sweden, 22—24 January 1996 
(http://www1.oecd.org/ehs/test/background.htm).
 
(7) OECD (1998) Harmonized Integrated Hazard Classification 
System for Human Health and Environmental Effects of Chemical Substances, as endorsed by the 28th Joint Meeting of the Chemicals Committee and the Working Party on 
Chemicals, November 1998 (http://www1.oecd.org/ehs/Class/ 
HCL6.htm).
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 245
 
(8) OECD (2000). Guidance Document on the Recognition, 
Assessment and Use of Clinical Signs as Humane Endpoints 
for Experimental Animals Used in Safety Evaluation. OECD Environmental Health and Safety Publications. Series on Testing and Assessment №.19 (http://www1.oecd.org/ehs/test/ 
monos.htm).
 
(9) EPA (1990). Atlas of Dermal Lesions, (20T-2004). United 
States Environmental Protection Agency, Office of Pesticides and Toxic Substances, Washington, DC, August 1990.
 
[Може  да се получи  от секретариата  на OECD].  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 246
 
Таблица  I 
СКАЛА  НА КОЖНИТЕ  ПРОМЕНИ  
Образуване  на еритема  и есхара  
Отсъствие  на еритема  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 0 
Много  слаба  еритема  (едва забележима ) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1 
Добре  изразена  еритема  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2 
Умерена  до тежка  еритема  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3 
Тежка  еритема  (силно  зачервяване  — с цвят  на цвекло ) до 
образуване  на есхара , което  не позволява  да се отчете  балът  на 
еритемата  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4  
Максимален  бал — 4  
Образуване  на едем  
Отсъствие  на едем  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 0 
Много  слаб  едем  (едва забележим ) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1 
Лек едем  (границите  на едемния  участък  са видимо  повдигнати  и 
се очертават  ясно ) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2 
Умерено  изразен  едем  (подуване  около  1 мм) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3 
Тежък  едем  (подуване  повече  от 1 мм, което  обхваща  участък , по- 
голям  от третирания ) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4  
Максимален  бал — 4  
Когато  е необходимо  да се изяснят  противоречиви  резултати , може  да се 
проведе  хистопатологично  изследване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 247
 
ПРИЛОЖЕНИЕ  
Стратегия  за последователно  изпитване  за оценка  на 
дразнещо /корозивнодействие  върху  кожата  
ОБЩИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
В интерес  на научната  стойност  на проучването  и на хуманното  отношение  
към животните  е важно  да се избягва  ненужното  използване  на опитни  
животни  и да се допускат  колкото  е възможно  по-малко  изпитвания , за 
които  се очаква , че ще предизвикат  тежки  увреждания . Преди  да се 
пристъпи  към in vivo  изпитвания , следва  да се оцени  пялата  съществуваща  
информация  по отношение  на дразнещия /корозивния  потенциал  на дадено  
химично  вещество  за кожата . Възможно  е вече да съществуват  достатъчно  
данни , въз основа  на които  веществото  може  да се класифицира  по 
отношение  на кожно  дразнещо /корозивно  действие , без да е необходимо  
да се извършват  изпитвания  върху  лабораторни  животни . Затова  чрез 
анализа  на съществуващите  данни  и стратегията  за последователно  
изпитване  се свежда  до минимум  необходимостта  от in vivo  изпитвания , 
особено  когато  се очаква , че химичното  вещество  ще предизвика  тежки  
увреждания  у животните . 
Препоръчва  се да се извърши  анализ  на съществуващите  данни  за кожното  
дразнещо  и корозивно  действие  на химичното  вещество , за да се прецени  
дали  да се проведат  други  проучвания  освен  in vivo  дермалните  изпитвания , 
които  могат  да подпомогнат  оценката  на дразнещия /корозивния  потенциал . 
Когато  се прецени , че са нужни  по-нататъшни  проучвания , се препоръчва  
необходимите  експериментални  данни  да се получат , като се приложи  
стратегията  за последователно  изпитване . За химични  вещества , които  не 
са изпитвани  досега , стратегията  за последователно  изпитване  следва  да се 
използва , за да се съберат  всички  данни , необходими  за оценката  на 
дразнещия /корозивния  ефект  върху  кожата . Стратегията  за изпитване , 
изложена  в настоящото  приложение , е разработена  на семинар  на OECD 
(1) и по-късно  е утвърдена  и разширена  в рамките  на Хармонизираната  
интегрирана  система  за класифициране  на опасностите  във връзка  с 
ефектите  на химичните  вещества  върху  човешкото  здраве  и околната  
среда , приета  на 28-ата съвместна  среща  на Комитета  по химикалите  и 
работната  група  по химикалите  през ноември  1998 г. (2).  
Въпреки  че стратегията  за последователно  изпитване  не е включена  като 
неразделна  част от метод  Б.4, тя представлява  препоръчителният  подход  за 
оценка  на дразнещия  и корозивния  ефект  върху  кожата . Този  подход  съотв­  
етства  в най-висока  степен  на критериите  за добра  практика  и етика  при in 
vivo изпитванията  за оценка  на кожното  дразнещо  и корозивно  действие . В 
представения  метод  са дадени  указания  за провеждането  на in vivo  
изпитването  и се обобщават  факторите , които  следва  да се вземат  
предвид , преди  да се пристъпи  към него . Стратегията  предлага  подход  за 
оценка  на съществуващите  данни  за кожното  дразнещо /корозивно  действие  
на химичните  вещества  и поетапен  подход  за получаване  на необходимите  
данни  за веществата , които  досега  не са били  изследвани  или за които  са 
необходими  допълнителни  проучвания . В нея също  се препоръчва  при 
определени  условия  извършването  на валидирани  и утвърдени  in vitro  или 
ех vivo  методи  за оценка  на кожно  корозивно /дразнещо  действие . 
ОПИСАНИЕ  НА СТРАТЕГИЯТА  ЗА ОЦЕНКА  И ИЗПИТВАНЕ  
Преди  да се предприемат  изпитвания  в рамките  на стратегията  за последов­  
ателно  изпитване  (вж. фигурата ), следва  да се прецени  цялата  налична  
информация , за да се определи  необходимостта  от провеждане  на in vivo  
дермално  изпитване . Въпреки  че при оценката  на отделни  параметри  
(например  много  високи  или ниски  стойности  на рН) може  да се получи  
съществена  информация , следва  да се разгледат  всички  съществуващи  
данни . Всички  сведения  за ефектите  на дадено  вещество  или негови  
структурни  аналози  следва  да бъдат  оценени  в процеса  на вземане  на 
решение  и да се представи  обосновката  на взетото  решение . На първо  
място  следва  да се обърне  внимание  на съществуващите  данни  за 
ефектите  върху  хора  и животни , а след  това да се оценят  резултатите  от 
in vitro  или ех vivo  изпитвания . Във всички  случаи , когато  е възможно , 
следва  да се избягва  провеждането  на in vivo  изпитвания  на корозивни  
химични  вещества . Факторите , които  се вземат  под внимание  в стратегията  
на изпитване , включват : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 248
 
Оценка  на съществуващите  данни  за хора  и животни  (стъпка  1). 
Съществуващите  данни  за хора , като например  данни  от клинични  
проучвания , проучвания  върху  работници , описания  на случаи  и/или 
данни  от изпитвания  върху  животни , например  от проучвания  на острата  
дермална  токсичност  или дермалната  токсичност  при многократно  
постъпване , следва  да се разглеждат  с предимство , защото  те осигуряват  
информация , пряко  свързана  с ефектите  върху  кожата . Не е необходимо  да 
се провеждат  in vivo  изпитвания  на вещества  с известно  дразнещо  или 
корозивно  действие , както  и на тези, при които  данните  убедително  
показват  отсъствие  на дразнещ  или корозивен  ефект . 
Анализ  на зависимостите  „структура -активност “ (structure activity relati ­
onships, SAR) ( стъпка  2). Резултатите  от изпитвания  на вещества  с подобна  
химична  структура  следва  да се вземат  под внимание , ако са налице  такива  
данни . Когато  съществуват  достатъчно  данни  за хора  и/или животни , свид­  
етелстващи  за дермално  дразнещо /корозивно  действие  на химични  вещества  
с аналогична  структура  или смеси  от такива  вещества , може  да се приеме , 
че веществото , което  подлежи  на проучване , ще предизвика  същия  ефект . В 
тези случаи  може  да се прецени , че не е необходимо  да се провежда  
изпитване . Съгласно  стратегията  за последователно  изпитване  негативните  
данни  от проучвания  на химични  вещества  с аналогична  структура  или 
смеси  от такива  вещества  не се смятат  като достатъчно  основание , за да 
се приеме  отсъствие  на корозивен  или дразнещ  ефект  за дадено  химично  
вещество . За установяване  на потенциално  корозивно /дразнещо  действие  
върху  кожата , следва  да се използват  валидирани  и утвърдени  SAR 
подходи . 
Физикохимични  свойства  и химична  активност  (стъпка  3). Химични  
вещества  с много  високо  или много  ниско  рН (рН ≥ 11,5 или рН ≤ 2,0) 
могат  да предизвикат  силно  изразени  локални  ефекти . Когато  дадено  
химично  вещество  може  да се определи  като корозивно  за кожата  въз 
основа  на високо  или ниско  рН, следва  да се вземе  под внимание  и 
неговият  алкално -киселинен  резерв  (или буферен  капацитет ) (3)(4). Когато  
данните  за буферния  капацитет  показват , че веществото  може  да не е 
корозивно  за кожата , следва  да се проведе  по-нататъшно  проучване  за 
потвърждаване  на това предположение , за предпочитане  посредством  
валидирано  и утвърдено  in vitro  или ех vivo  изпитване  (вж. стъпки  5 и 6). 
Дермална  токсичност  (стъпка  4). Когато  е доказано , че дадено  химично  
вещество  проявява  висока  токсичност  по дермален  път на постъпване , 
провеждането  на in vivo  изпитване  за кожно  дразнещо /корозивно  действие  
може  да бъде  практически  невъзможно , тъй като количеството  от 
изпитваното  вещество , което  обикновено  се прилага , може  да надвиши  
дозите , водещи  до изразена  токсичност  или леталитет , и вследствие  на 
това изпитването  да доведе  до смърт  или тежко  страдание  на опитните  
животни . В допълнение , когато  са извършени  проучвания  на дермалната  
токсичност  върху  зайци  албиноси  с лимитираща  доза 2 000 mg/kg т. т. 
или по-високи  дози  и при тях не е установено  кожно  дразнене  или 
корозивен  ефект , може  да се прецени , че не е необходимо  да се провежда  
по-нататъшно  изпитване  за кожно  дразнещо /корозивно  действие . Когато  
острата  дермална  токсичност  се оценява  въз основа  на извършени  в 
миналото  проучвания , следва  да се имат  предвид  редица  съображения . 
Например  представените  данни  за кожни  увреждания  могат  да бъдат  
непълни . Изпитването  и наблюденията  може  да са извършени  не върху  
зайци , а върху  друг  животински  вид, който  се различава  значително  по 
своята  чувствителност  към веществото . Също  така формата , в която  
изпитваното  вещество  е приложено  на животните , може  да не е избрана  
подходящо  с оглед  оценката  на кожно  дразнещо /корозивно  действие  
(например  при оценката  на дермалната  токсичност  веществата  се 
използват  често  в разредено  състояние  (5)). Въпреки  това, в случаите , 
когато  са налице  адекватно  планирани  и проведени  проучвания  на 
дермалната  токсичност  върху  зайци , отрицателните  резултати  могат  да се 
смятат  като достатъчно  доказателство  за това, че веществото  не проявява  
корозивно  или дразнещо  действие . 
Резултати  от in vitro или ех vivo изпитвания  (стъпки  5 и 6). Химични  
вещества , които  проявяват  корозивни  или силно  изразени  дразнещи  
свойства  при валидирано  и утвърдено  in vitro  или ех vivo  изпитване  за 
оценка  на тези специфични  ефекти  (6)(7), не е необходимо  да се изпитват  
върху  животни . Може  да се приеме , че тези вещества  ще предизвикат  
подобни  силно  изразени  ефекти  in vivo.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 249
 
In vivo изпитване  върху  зайци  (стъпки  7 и 8). Когато  е взето  решение  за 
провеждане  на in vivo  изпитване , то следва  да започне  с третиране  на едно  
животно . Когато  резултатите  от третирането  показват , че веществото  е 
корозивно  за кожата , по-нататъшно  изпитване  не следва  да се извършва . 
Ако при първоначалното  изпитване  не се наблюдава  корозивен  ефект , 
дразнещият  ефект  или негативният  резултат  следва  да се потвърди , като 
се третират  най-много  две допълнителни  животни  при 4-часова  експозиция . 
Когато  при първоначалното  изпитване  се наблюдава  дразнещо  действие , 
изпитването  за потвърждение  на резултата  може  да се извърши  последов­  
ателно  (върху  едно  животно  и при необходимост  — върху  второ  животно ) 
или едновременно  върху  две животни . 
ПРЕПРАТКИ  
(1) OECD (1996) Test Guidelines Programme: Final Report on the OECD 
Workshop on Harmonization of Validation and Acceptance Criteria for 
Alternative Toxicological Test Methods. Held on Solna, Sweden, 22—24 January 1996 (http://www1.oecd.org/ehs/test/background.htm).
 
(2) OECD (1998) Harmonized Integrated Hazard Classification System for 
Human Health and Environmental Effects of Chemical Substances, as 
endorsed by the 28  th Joint Meeting of the Chemicals Committee and the 
Working Party on Chemicals, November 1998 (http://www1.oecd.org/ehs/ Class/HCL6.htm).
 
(3) Worth, A. P., Fentem J. H., Balls M., Botham P. A., Curren R. D., Earl L. 
K., Esdail D. J., Liebsch M.(1998). An Evaluation of the Proposed OECD 
Testing Strategy for Skin Corrosion. ATLA 26, 709—720.  
(4) Young, J. R., How, M. J., Walker, A. P., Worth, W. M. H. (1988). Clas ­
sification as Corrosive or Irritant to Skin of Preparations Containing Acidic or Alkaline Substances, Without Testing on Animals. Toxic. In Vitro, 2 (1) 
pp. 19—26.
 
(5) Patil, S. M., Patrick, E., Maibach, H. I. (1996) Animal, Human, and In Vitro 
Test Methods for Predicting Skin Irritation, in:Francis N. Marzulli and Howard I. Maibach (editors): Dermatotoxicology. Fifth Edition ISBN 
1-56032-356-6, Chapter 31, 411—436.
 
(6) Testing Method B.40.  
(7) Fentem, J. H., Archer, G. E. B., Balls, M., Botham, P. A., Curren, R. D., 
Earl, L. K., Edsail, D. J., Holzhutter, H. G. and Liebsch, M. (1998) The ECVAM international validation study on in vitro tests for skin corrosivity. 2. Results and evaluation by the Management Team. Toxicology in Vitro 12, 
pp.483—524.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 250
 
Фигура  
СТРАТЕГИЯ  ЗА ИЗПИТВАНЕ  И ОЦЕНКА  НА ДРАЗНЕЩО /КОРОЗИВНОДЕЙСТВИЕ  
ВЪРХУ  КОЖАТА
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 251
 
Б.5. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ : ОЧНО  ДРАЗНЕЩО /КОРОЗИВНО  
ДЕЙСТВИЕ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на ОECD TG 405 (2002)  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
При подготовката  на този осъвременен  метод  специално  
внимание  е отделено  на възможностите  за усъвършенстване  на 
метода  посредством  оценка  на пялата  съществуваща  
информация  за изпитваното  вещество  с оглед  избягване  на 
ненужно  изпитване  върху  лабораторни  животни . В този метод  
се препоръчва , преди  да се пристъпи  към in vivo  изпитването  за 
оценка  на острото  корозивно /дразнещо  действие  върху  очите , да 
се извърши  анализ  на съществуващите  данни  за химичното  
вещество  (1), които  имат  отношение  към тези ефекти . Когато  
липсват  достатъчно  данни , се препоръчва  те да бъдат  
получени  чрез извършване  на последователно  изпитване  (2)(3). 
Стратегията  за изпитването  включва  извършването  на 
валидирани  и утвърдени  in vitro  изпитвания  и е изложена  като 
приложение  към този метод . Също  така се препоръчва , преди  да 
се вземе  решение  за провеждане  на in vivo  изпитване  за очно  
дразнещо /корозивно  действие , да се проведе  in vivo  изпитване  за 
оценка  на кожното  дразнещо /корозивно  действие , въз основа  на 
което  може  да се предвиди  корозивният  ефект  върху  очите . 
В интерес  както  на научната  стойност  на проучването , така и на 
хуманното  отношение  към лабораторните  животни  е да не се 
взима  решение  за провеждане  на in vivo  изпитване , преди  да 
бъдат  анализирани  и оценени  всички  налични  данни  във 
връзка  с потенциалното  корозивно /дразнещо  действие  на 
веществото  върху  очите . Тук се включват  данни  от 
съществуващи  проучвания  върху  хора  и/или лабораторни  
животни , данни  за корозивно /дразнещо  действие  на едно  или 
повече  вещества  с подобен  химичен  строеж  или смеси  от 
такива  вещества , данни  за висока  киселинност  или алкалност  
(4)(5), както  и резултати  от валидирани  и утвърдени  in vitro  
или ех vivo  методи  за оценка  на дразнещо /корозивно  действие  
върху  кожата  (6) (6а). Проучванията  могат  да бъдат  извършени  
преди  анализа  на съществуващите  данни  или в резултат  от този 
анализ . 
За някои  вещества  анализът  може  да покаже  необходимост  от 
извършване  на in vivo  изпитване  за оценка  на потенциалното  
дразнещо /корозивно  действие  върху  очите . Във всички  тези 
случаи , преди  да се вземе  решение  за провеждане  на това 
изпитване , се препоръчва  да се извърши  in vivo  изпитване  на 
дермалните  ефекти  на веществото  и оценка  на резултатите  от 
него  съгласно  метод  Б.4 (7). Прилагането  на анализа  на 
съществуващите  данни  и стратегията  за последователно  
изпитване  следва  да доведе  до намаляване  на необходимостта  
от извършване  на in vivo  изпитвания  за очно  корозивно /­ 
дразнещо  действие  на веществата , за които  съществуват  дост­  
атъчно  събрани  данни  от други  проучвания . In vivo  изпитване  за 
оценка  на очното  корозивно /дразнещо  действие  може  да се 
проведе , когато  потенциалното  очно  корозивно /дразнещо  
действие  не може  да се оцени  чрез прилагане  на стратегията  
за последователно  изпитване  дори  след  извършването  на in 
vivo изпитване  за кожно  дразнещо /корозивно  действие . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 252
 
В приложението  към този метод  е представена  препоръчителна  
стратегия  за последователно  изпитване , която  включва  прил­  
агането  на валидирани  in vitro  или ех vivo  методи  за оценка  на 
корозивно /дразнещо  действие . Стратегията  е разработена  и 
единодушно  препоръчана  от участниците  в семинар  на ОECD 
(8) и е приета  като препоръчителна  стратегия  за изпитване  в 
рамките  на Глобалната  система  за хармонизиране  на класифик­  
ацията  на химични  вещества  (GSH) (9). Препоръчва  се тази 
стратегия  за изпитване  да се приложи , преди  да се проведе  in 
vivo изпитване . За нови  вещества  стратегията  представлява  
препоръчителният  подход  за поетапно  изпитване  с цел 
получаване  на достоверни  научни  данни  за корозивно /дразнещо  
действие . За съществуващи  вещества  с недостатъчно  данни  за 
кожно  и очно  корозивно /дразнещо  действие  стратегията  следва  
да се приложи , за да се получат  липсващите  данни . 
Използването  на друга  стратегия  или процедура  за изпитване  
или решението  да не се прилага  поетапният  подход  за 
изпитване  следва  да бъдат  обосновани . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Очно  дразнене  е предизвикването  на промени  в окото  след  
прилагане  на изпитваното  вещество  върху  предната  очна  
повърхност , като промените  се възстановяват  напълно  до 21- 
вия ден след  третирането . 
Корозивно  действие  върху  очите  е предизвикването  на 
увреждане  на тъканите  на окото  или сериозно  увреждане  на 
зрението  вследствие  прилагането  на изпитваното  вещество  
върху  предната  очна  повърхност , като увреждането  не се възста­  
новява  напълно  до 21-вия ден след  третирането . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество  се прилага  еднократно  върху  едно  от 
очите  на опитното  животно , а окото , което  не е третирано , 
служи  като контрола . През  определени  интервали  от време  се 
отчита  и оценява  степента  на дразнещо /корозивно  действие  
върху  конюнктивата , роговицата  и ириса . Други  ефекти  върху  
очите , както  и неблагоприятни  системни  ефекти  също  се 
описват  с оглед  извършването  на цялостна  оценка  на токсичното  
действие . Продължителността  на наблюдението  следва  да бъде  
достатъчно  голяма , за да може  да се отчете  дали  наблюдаваните  
ефекти  са обратими  или не. 
Животните , които  показват  трайни  признаци  на тежък  стрес  
и/или болка  в който  и да е момент  от изпитването , следва  да 
бъдат  умъртвени  по хуманен  начин  и наблюдаваните  ефекти  да 
се вземат  под внимание  при оценката  на веществото . 
Критериите  за вземане  на решение  за умъртвяване  по хуманен  
начин  на животните , които  изпитват  тежко  страдание  и се 
намират  в терминално  състояние , са посочени  в препратка  (10)  
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.4.1.  Подготовка  на in vivo  изпитването  
1.4.1.1.  Избор  на вида  опитни  животни  
Предпочитаните  опитни  животни  са зайците  албиноси . 
Използват  се млади , здрави , полово  зрели  животни . 
Използването  на други  животински  видове  следва  да бъде  обос­  
новано . 
1.4.1.2.  Подготовка  на животните  
Двете  очи на всяко  експериментално  животно , което  е избрано  
за евентуално  включване  в изпитването , следва  да се прегледат  
през последните  24 часа преди  началото  му. Животните , при 
които  се установяват  признаци  на очно  дразнене , очни  
дефекти  или предшестващо  увреждане  на роговицата , не 
следва  да се използват . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 253
 
1.4.1.3.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Животните  следва  да бъдат  разпределени  в отделни  клетки . В 
помещението , в което  се намират  зайците , следва  да се 
поддържа  температура  20 o С (± 3  o С). Стойностите  на относит­  
елната  влажност  следва  да не са по-ниски  от 30 % и е желателно  
да не превишават  70 % освен  по време  на почистване  на 
помещението . Целта  е относителната  влажност  да се поддържа  
в интервала  50—60 %. Осветлението  следва  да бъде  изкуствено , 
като се редуват  12 часа светлина  и 12 часа тъмнина . При 
храненето  се прилагат  обичайните  лабораторни  диети  с 
неограничен  достъп  до питейна  вода . 
1.4.2.  Процедура  на изпитването  
1.4.2.1.  Прилагане  на изпитваното  вещество  
Изпитваното  вещество  следва  да се постави  в конюнктивалната  
торбичка  на едното  око на всяко  от животните  след  леко  
издърпване  на долния  клепач  по-напред  от очната  ябълка . 
След  това двата  клепача  се държат  долепени  за около  една  
секунда , за да може  цялото  поставено  количество  от веществото  
да се задържи  в контакт  с окото . Другото  око не се третира  и 
служи  за контрола . 
1.4.2.2.  Промивка  
Очите  на опитните  животни  не следва  да се промиват  в продъ­  
лжение  най-малко  на 24 часа след  прилагане  на веществото , 
освен  в случаите , когато  веществото  е в твърдо  агрегатно  
състояние  (виж точка  1.4.2.3.2) и когато  корозивният  или 
дразнещият  ефект  се проявява  непосредствено  след  третирането . 
Промивка  може  да се направи  на 24-ия час след  третирането , 
ако е необходимо . 
Използването  на допълнителна  група  животни  за изследване  
влиянието  на промивката  не се препоръчва , освен  ако не е дост­  
атъчно  обосновано  от научна  гледна  точка . Когато  е необходимо  
използването  на допълнителна  група , тя следва  да включва  два 
заека . Условията  за извършване  на промивката  следва  да се 
документират  внимателно , включително  дата и час, състав  и 
температура  на разтвора  за промиване  и използвано  количество  
от него , продължителност  и скорост  на промиването . 
1.4.2.3.  Дози  
1.4.2.3.1.  Изпитване  на течности  
Когато  се изпитват  течни  вещества , третирането  се извършва  с 
количество  от 0,1 ml. Вещества , които  се употребяват  под 
формата  на спрей , следва  да не бъдат  прилагани  директно  
върху  окото  чрез пръскане . В този случай  част от течността  
следва  да се изпръска  и да се събере  в контейнер , след  което  
от нея се взема  необходимото  количество  от 0,1 ml и се поставя  
в окото . 
1.4.2.3.2.  Изпитване  на твърди  вещества  
Когато  се изпитват  твърди , пастообразни  вещества  и вещества , 
съставени  от дребни  частици , се прилага  количество  с обем  0,1 
ml или маса  не повече  от 100 mg. Материалът , който  се изпитва , 
следва  да бъде  стрит  до фин прах . Обемът  на прахообразното  
твърдо  вещество  следва  да бъде  измерен  след  леко  уплътняване , 
например  чрез почукване  върху  съда , в който  се извършва  
измерването . Когато  твърдото  вещество  не се е отстранило  от 
окото  по естествен  път при първото  отчитане  на наблюдаваните  
промени  (един  час след  третирането ), окото  може  да се изплакне  
с физиологичен  разтвор  или дестилирана  вода . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 254
 
1.4.2.3.3.  Изпитване  на аерозоли  
При всички  веществата , които  се прилагат  като спрей  (спрей  с 
помпа  или аерозол ), се препоръчва  част от течността  да се 
изпръска  в контейнер  и от нея да се вземе  количеството , необ­  
ходимо  за третиране  на окото . Изключение  се прави  само  за 
вещества  в аерозолни  флакони  под налягане , които  не могат  
да се съберат  по този начин , поради  това че се изпаряват . В 
тези случаи  окото  следва  да се придържа  отворено  и 
изпитваното  вещество  се поставя  директно  върху  предната  му 
повърхност  с едно  изпръскване  в продължение  на около  една  
секунда . Флаконът  се държи  пред  окото  на разстояние  10 cm. 
Разстоянието  може  да варира  в зависимост  от налягането  на 
аерозола  и неговия  състав . Изпръскването  под налягане  следва  
да се извърши  внимателно , за да не се увреди  окото . В някои  
случаи  може  да бъде  необходимо  да се оцени  потенциалът  за 
„механично “ увреждане  на окото  от налягането  на аерозола . 
Оценка  на дозата  от аерозола , с която  е третирано  окото , може  да 
бъде  направена  чрез следната  процедура : веществото  се напръсква  
върху  тегловна  хартия  през отвор  с размерите  на окото  на заека , 
поставен  непосредствено  пред  хартията . Чрез  разликата  в теглото  
на хартията  преди  и след  напръскването  се определя  приблиз­  
ително  количеството , което  би попаднало  върху  окото . За 
летливи  вещества  вместо  тегловна  хартия  може  да се използва  
контейнер . Изпръсканото  в него  количество  се определя  чрез 
претегляне  на контейнера  преди  и след  изпразването  му. 
1.4.2.4.  Първоначално  изпитване  (in vivo изпитване  за оценка  на очно  
дразнещо /корозивно  действие  с използване  на едно  опитно  
животно ) 
В съответствие  със стратегията  за последователно  изпитване  
(вж. приложение  1) се препоръчва  in vivo  изпитването  да се 
извърши  първоначално  върху  едно  опитно  животно . 
Когато  това изпитване  се проведе  съгласно  описаната  процедура  
и резултатите  показват , че веществото  може  да прояви  
корозивно  или изразено  дразнещо  действие  върху  очите , не 
следва  да се извършва  по-нататъшно  изпитване  за оценка  на 
очното  дразнещо /корозивно  действие . 
1.4.2.5.  Местна  упойка  
Необходимостта  от използване  на местни  анестетици  се 
преценява  конкретно  за всеки  отделен  случай . Когато  анализът  
на съществуващите  данни  показва , че изпитваното  вещество  
може  да причини  болка  или при първоначалното  изпитване  се 
появява  болка , преди  третирането  може  да се приложи  местен  
анестетик . Видът , концентрацията  и дозата  на анестетика  следва  
да се подберат  внимателно , така че употребата  му да не доведе  
до промяна  в реакцията  към изпитваното  вещество . 
Контролното  око се третира  с анестетика  по същия  начин . 
1.4.2.6.  Потвърдително  изпитване  (in vivo изпитване  за оценка  на очно  
дразнещо  действие  с използване  на допълнителни  опитни  
животни ). 
Когато  при първоначалното  изпитване  не се наблюдава  
корозивен  ефект , дразнещият  ефект  или негативният  резултат  
следва  да се потвърдят , като се третират  най-много  две допълн­  
ителни  животни . Ако при първоначалното  изпитване  се уста­  
новява  силно  изразено  дразнещо  действие  и при потвърдит­  
елното  изпитване  се очаква  силно  изразен  (необратим ) ефект , 
се препоръчва  потвърдителното  изпитване  да се извърши  чрез 
последователно  третиране  (върху  едно  животно  и след  това при 
необходимост  — върху  още едно  животно ) вместо  
едновременно  върху  двете  допълнителни  животни . Когато  при 
второто  третирано  животно  се наблюдава  корозивен  или силно  
изразен  дразнещ  ефект , изпитването  се прекратява . При поява  на 
слаб  или умерен  дразнещ  ефект  може  да се наложи  използването  
на допълнителни  опитни  животни , за да се потвърдят  тези 
резултати . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 255
 
1.4.2.7.  Период  на наблюдение  
Продължителността  на периода  на наблюдение  следва  да бъде  
достатъчна  за цялостната  оценка  на степента  и обратимостта  на 
наблюдаваните  ефекти . Въпреки  това изпитването  следва  да се 
прекрати  във всеки  момент , когато  опитните  животни  покажат  
трайни  признаци  на силна  болка  или стрес  (9). Обикновено  за да 
се установи  дали  ефектите  са обратими , животните  следва  да се 
наблюдават  в продължение  на 21 дни след  прилагането  на 
веществото . Ако преди  края  на 21-дневния  период  се 
установи , че промените  са обратими , изпитването  се прекратява  
в момента , когато  това е установено . 
1.4.2.7.1.  Клинично  наблюдение  и оценка  на очните  реакции  
Очите  се преглеждат  на 1-вия, 24-ия, 48-ия и 72-рия час след  
прилагането  на изпитваното  вещество . Наблюдението  не следва  
да продължава  по-дълго  от необходимото  за получаване  на дост­  
атъчно  ясна  и пълна  информация . Животните , които  показват  
трайни  признаци  на силна  болка  или стрес , следва  да бъдат  
умъртвени  незабавно  по хуманен  начин  и тези ефекти  да се 
вземат  под внимание  при оценката  на веществото . Опитните  
животни  със следните  очни  увреждания , настъпили  след  
третирането , следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  начин : 
перфорация  на роговицата  или язви, засягащи  значителна  част 
от роговицата , включително  стафилома ; кръв  в предната  камера  
на окото ; помътняване  на роговицата  от четвърта  степен , коетс  
персистира  за 48 часа; отсъствие  на реакция  на светлината  
(промени  в ириса  от втора  степен ), което  персистира  за 72 
часа; язви на конюнктивата ; некроза  на конюнктивата  или 
мигателните  ципи ; влажна  некроза . Умъртвяването  се налага , 
защото  тези лезии  най-често  са необратими . 
Опитните  животни , при които  не се развиват  очни  лезии , следва  
да бъдат  умъртвени  не по-рано  от 3 дни след  третирането . 
Опитни  животни  с леко  до умерено  изразени  лезии  следва  да 
се наблюдават , докато  лезиите  отзвучат  или в продължение  на 
21 дни, след  което  изпитването  се прекратява . Наблюдението  
следва  да се извърши  на 7-ия, 14-ия и 21-вия ден след  
третирането , за да се прецени  състоянието  на получените  
лезии  и тяхната  обратимост  или необратимост . 
При всяко  наблюдение  следва  да се отчита  степента  на очните  
реакции  (за конюнктива , роговица  и ирис ) (таблица  1). Всички  
други  очни  лезии  (например  панус , пигментиране ) или неблаг­  
оприятни  системни  ефекти  също  следва  да се опишат . 
Прегледът  на очните  реакции  може  да се улесни  чрез използване  
на бинокулярна  лупа , ръчна  шпалт -лампа , биомикроскоп  или 
друг  подходящ  уред . След  отчитане  на наблюденията  на 24-ия 
час очите  могат  допълнително  да се изследват  с помощта  на 
флуоресцеин . 
Оценката  и степенуването  на очните  промени  е субективен  
процес . За да се постигне  съответствие  в оценките  при класиф­  
ицирането  на очните  промени  и да се подпомогнат  
лабораториите , в които  се провеждат  изпитвания , и лицата , 
които  наблюдават  животните  и оценяват  намерените  промени , 
персоналът , извършващ  наблюдението , следва  да се обучи  добре  
да прилага  класификационната  скала . 
2. ДАННИ  
2.2. ОЦЕНКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Баловата  оценка  на очното  дразнене  следва  да се разглежда  
заедно  с вида , тежестта  и обратимостта  или необратимостта  на 
настъпилите  лезии . Индивидуалната  балова  оценка  не е 
единственият  критерий  за определяне  на дразнещите  свойства  
на изпитваното  вещество , той като се оценяват  и други  ефекти  
на веществото . Вместо  това индивидуалният  бал следва  да се 
разглежда  като стойност , която  има съдържание  само  когато  е 
подкрепена  от пълното  описание  и оценка  на всички  набл­  
юдения . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 256
 
3. ДОКЛАДВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ОТЧЕТ  ЗА ИЗПИТВАНЕТО  
Отчетът  за изпитването  следва  да включва  следната  
информация : 
Обосновка  на извършеното  in vivo  изпитване : резултати  от 
анализа  на съществуващите  данни  от предишни  изпитвания , 
включително  резултатите  от прилагането  на стратегията  за 
последователно  изпитване : 
— описание  на съществените  данни  от предишни  изпитвания ; 
— данни , получени  при всяка  стъпка  от стратегията  за 
изпитване ; 
— описание  на извършените  in vitro  изпитвания , включително  
подробно  представяне  на процедурите  за изпитване  и резулт­  
атите , получени  при прилагане  на изпитваните  и 
референтните  химични  вещества ; 
— описание  на проведеното  in vivo  изпитване  за оценка  на 
кожно  дразнещо /корозивно  действие  и на получените  
резултати ; 
— анализ  на съществуващите  данни  с оглед  преценка  на необ­  
ходимостта  от извършване  на in vivo  проучване . 
Изпитвано  вещество : 
— данни  за идентифициране  на химичното  вещество  (напр . 
CAS номер , източник , чистота , известни  примеси , номер  на 
партидата ); 
— физична  природа  и физикохимични  свойства  (напр . рН, 
летливост , разтворимост , стабилност , химична  реакция  с 
вода ); 
— при изпитване  на смеси  следва  да се представят  данни  за 
качествения  състав  на сместа  и процентното  съдържание  на 
компонентите  ѝ; 
— когато  се използва  местен  анестетик , за него  се представят  
данни  за идентичност , чистота , вид, доза, възможност  за 
взаимодействие  с изпитваното  вещество . 
Носител : 
— химично  идентифициране , концентрация  (когато  е необ­  
ходимо ), използван  обем ; 
— обосновка  за избора  на носителя . 
Опитни  животни : 
— вид/порода , обосновка  за използване  на други  животински  
видове /породи  освен  зайци  албиноси ; 
— възраст  на животните  в началото  на проучването ; 
— брой  на животните  от всеки  пол в опитните  и контролните  
групи  (когато  се изисква ); 
— индивидуална  телесна  маса  на всяко  животно  в началото  и в 
края  на изпитването ; 
— източник  за доставка  на животните , условия  на отглеждане , 
диета  и т.н. 
Резултати : 
— описание  на методите  за изследване  на очния  статус , 
използвани  при характеризирането  и степенуването  на 
очните  промени  във всеки  момент  на отчитане  (напр . 
използване  на ръчна  шпалт -лампа , биомикроскоп , 
флуоресцеин  и др.); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 257
 
— представяне  в табличен  вид на данните  за проявите  на 
дразнещо /корозивно  действие  за всяко  животно  във всички  
моменти  на отчитане  до отстраняването  на животното  от 
изпитването ; 
— описание  в разказна  форма  на вида  и степента  на наблюда­  
ваните  прояви  на дразнещо /корозивно  действие ; 
— описание  на всички  други  очни  лезии  (например  васк­  
уларизация , образуване  на панус , адхезии , пигментиране ); 
— описание  на неблагоприятни  локални  ефекти  освен  очните  
лезии , както  и на неблагоприятни  системни  ефекти  и хист­  
опатологични  наблюдения , ако такива  са налице . 
Обсъждане  на резултатите . 
3.2. ИНТЕРПРЕТАЦИЯ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Екстраполацията  на резултатите  от проучванията  на очното  
дразнене  върху  лабораторни  животни  е валидна  само  в 
ограничена  степен . В много  случаи  зайците  албиноси  са по- 
чувствителни  от хората  към вещества  с очно  дразнещо  или 
корозивно  действие . 
При интерпретацията  на данните  следва  внимателно  да се 
прецени  и изключи  възможността  дразненето  да е предизвикано  
вторично  вследствие  на инфекция . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Barratt, M. D., Castell, J. V., Chamberlain, M., Combes, R. D., 
Dearden, J. C., Fentem, J. H., Gerner, I., Giuliani, A., Gray, T. J. B., Livingston, D. J., Provan, W. M., Rutten, F. A. J. J. L., 
Verhaar, H. J. M., Zbinden, P. (1995) The Integrated Use of 
Alternative Approaches for Predicting Toxic Hazard. ECVAM Workshop Report 8. ATLA 23, 410—429.
 
(2) de Silva, O., Cottin, M., Dami, N., Roguet, R., Catroux, P., 
Toufic, A., Sicard, C. Dossou, K. G., Gerner, I., Schlede, E., Spielmann, H., Gupta, K. C., Hill, R. N. (1997) Evaluation of Eye Irritation Potential: Statistical Analysis and Tier Testing 
Strategies. Food Chem.Toxicol 35, 159—164.
 
(3) Worth A. P. and Fentem J. H. (1999) A general approach for 
evaluating stepwise testing strategies ATLA 27, 161—177.  
(4) Young, J. R., How, M. J., Walker, A. P., Worth W. M. 
H.(1988) Classification as Corrosive or Irritant to Skin of 
Preparations Containing Acidic or Alkaline Substance 
Without Testing on Animals. Toxicol.  In Vitro , 2, 19—26.  
(5) Neun, D. J. (1993) Effects of Alkalinity on the Eye Irritation 
Potential of Solutions Prepared at a Single pH. J. Toxicol. Cut. Ocular Toxicol. 12, 227—231.
 
(6) Fentem, J. H., Archer, G. E. B., Balls, M., Botham, P. A., 
Curren, R. D., Earl, L. K., Edsaile, D. J., Holzhutter, H. G. and Liebsch, M. (1998) The ECVAM international validation study 
on in vitro tests for skin corrosivity. 2. Results and evaluation 
by the Management Team. Toxicology in Vitro 12, pp.483—524.
 
(6a) Testing Method B.40. Skin Corrosion.  
(7) Testing method B.4. Acute toxicity: dermal irritation/corrosion.  
(8) OECD (1996) OECD Test Guidelines Programme: Final 
Report of the OECD Workshop on Harmonization of Vali ­
dation and Acceptance Criteria for Alternative Toxicological 
Test Methods. Held in Solna, Sweden, 22—24 January 1996 
(http://www.oecd.org/ehs/test/background.htm).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 258
 
(9) OECD (1998) Harmonized Integrated Hazard Classification 
System for Human Health and Environmental Effects of 
Chemical Substances, as endorsed by the 28  th Joint Meeting 
of the Chemicals Committee and the Working Party on Chemicals, November 1998 (http://www.oecd.org/ehs/Class/ 
HCL6.htm).
 
(10) Guidance Document on the Recognition, Assessment and Use 
of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation. OECD Environmental Health and Safety Publications. Series on Testing and 
Assessment №.19 (http://www.oecd.org/ehs/test/monos.htm).
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 259
 
Таблица  1 
СКАЛА  НА ОЧНИТЕ  УВРЕЖДАНИЯ  
Роговица  
Помътняване : степен  на плътност  (отчитането  се извършва  за участъка  с 
най-плътно  помътняване ) (*) 
Отсъствие  на улцерация  или помътняване  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 0 
Разпръснати  или дифузни  зони  на помътняване  (изключва  се 
лекото  замъгляване  на нормалния  блясък ); детайлите  на ириса  са 
ясно  различими  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1 
Ясно  различима  полупрозрачна  зона; детайлите  на ириса  са леко  
замъглени  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2 
Зона  със седефен  цвят ; детайлите  на ириса  не се забелязват ; 
големината  на зеницата  се определя  трудно  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3 
Непрозрачна  роговица ; ирисът  не се различава  през помътнената  
роговица  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4  
Максимален  бал: 4 
vide  
(*) Зоната  на помътняване  на роговицата  следва  да бъде  отбелязана . 
Ирис  
Без промени  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 0 
Забележимо  увеличени  гънки , конгестия , оток , умерена  
перикорнеална  хиперемия ; ирисът  реагира  на светлина  (вялата  
реакция  се смята  за признак  на увреждане ) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1 
Кръвоизлив , разрушаване  на нормалната  структура , което  е видимо  
макроскопски , или липса  на реакция  на светлина  . . . . . . . . . . . . . . . . . 2  
Максимален  бал: 2 
Конюнктиви  
Еритем  (отнася  се за палпебралната  и булбарната  конюнктива , като се 
изключват  роговицата  и ирисът ) 
Нормални  кръвоносни  съдове  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 0 
Хиперемия  на някои  кръвоносни  съдове  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1 
Дифузно  кървавочервено  оцветяване ; отделните  кръвоносни  съдове  
са трудно  различими  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2 
Дифузно  тъмночервено  оцветяване  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3  
Максимален  бал: 3 
Хемоза  
Подуване  (отнася  се за конюнктивата  на клепачите  и/или мигателните  ципи ) 
Липсва  подуване  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 0 
Наличие  на подуване , забелязва  се известна  разлика  спрямо  
нормалното  състояние  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 1 
Ясно  изразено  подуване  с частично  обръщане  на клепачите  . . . . . 2 
Подуване  със затворени  приблизително  наполовина  клепачи  . . . . . 3 
Подуване  със затворени  повече  от наполовина  клепачи  . . . . . . . . . . 4  
Максимален  бал: 4 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 260
 
ПРИЛОЖЕНИЕ  
Стратегия  за последователно  изпитване  за оценка  на 
дразнещо /корозивно  действие  върху  очите  
ОБЩИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
В интерес  на научната  стойност  на проучването  и на благополучието  на 
животните  е важно  да се избягва  ненужното  използване  на опитни  животни  и 
да се допускат  колкото  е възможно  по-малко  изпитвания , за които  се очаква , че 
ще предизвикат  тежки  увреждания . Преди  да се пристъпи  към in vivo  изпитване , 
следва  да се оцени  цялата  съществуваща  информация  по отношение  на 
дразнещия /корозивния  потенциал  на дадено  химично  вещество  за очите . 
Възможно  е вече да съществуват  достатъчно  данни , въз основа  на които  
веществото  може  да се класифицира  по отношение  на очното  дразнещо /­ 
корозивно  действие , без да е необходимо  да се извършват  изпитвания  върху  
лабораторни  животни . Затова  чрез анализа  на съществуващите  данни  и страт­  
егията  за последователно  изпитване  ще се сведе  до минимум  необходимостта  от 
in vivo  изпитвания , особено  когато  се очаква , че химичното  вещество  ще 
предизвика  тежки  увреждания  у животните . 
Препоръчва  се да се извърши  анализ  на съществуващите  данни  за очното  
дразнещо  и корозивно  действие  на химичното  вещество , за да се прецени  
дали  да се проведат  други  проучвания  освен  in vivo  изпитвания  върху  
очите , които  могат  да подпомогнат  оценката  на дразнещия /корозивния  поте­  
нциал . Когато  се прецени , че са нужни  по-нататъшни  проучвания , се 
препоръчва  необходимите  експериментални  данни  да се получат , като се 
приложи  стратегията  за последователно  изпитване . За химични  вещества , 
които  не са изпитвани  досега , стратегията  за последователно  изпитване  
следва  да се използва , за да се съберат  всички  данни , необходими  за 
оценката  на дразнещия /корозивния  ефект  върху  очите . Стратегията  за 
изпитване , изложена  в настоящото  приложение , е разработена  на семинар  
на OECD (1). По-късно  тя е утвърдена  и разширена  в рамките  на 
Хармонизираната  интегрирана  система  за класифициране  на опасностите  
във връзка  с ефектите  на химичните  вещества  върху  човешкото  здраве  и 
околната  среда , приета  на 28-ата съвместна  среща  на Комитета  по 
химикалите  и работната  група  по химикалите  през ноември  1998 г. (2).  
Въпреки  че стратегията  за последователно  изпитване  не е включена  като 
неразделна  част от метод  В.5, тя представлява  препоръчителният  подход  за 
оценка  на дразнещия  и корозивния  ефект  върху  очите . Този  подход  съотв­  
етства  в най-висока  степен  на критериите  за добра  практика  и етика  при in 
vivo изпитванията  за оценка  на очното  дразнещо  и корозивно  действие . В 
представения  метод  са дадени  указания  за провеждането  на in vivo  
изпитването  и се обобщават  факторите , които  следва  да се вземат  
предвид , преди  да се пристъпи  към него . Стратегията  предлага  подход  за 
оценка  на съществуващите  данни  за очното  дразнещо /корозивно  действие  
на химичните  вещества  и поетапен  подход  за получаване  на необходимите  
данни  за веществата , които  досега  не са изследвани  или за които  са необ­  
ходими  допълнителни  проучвания . В стратегията  се включва  първонач­  
алното  извършване  на валидирани  и утвърдени  in vitro  или ех vivo  
изпитвания  и след  това на изпитването  за оценка  на кожно  корозивно /­ 
дразнещо  действие  (метод  В.4) при определени  условия  (3)(4).  
ОПИСАНИЕ  НА СТРАТЕГИЯТА  ЗА ПОСЛЕДОВАТЕЛНО  
ИЗПИТВАНЕ  
Преди  да се предприемат  изпитвания  в рамките  на стратегията  за последов­  
ателно  изпитване  (вж. фигурата ), следва  да се разгледа  цялата  налична  
информация , за да се оцени  необходимостта  от провеждане  на in vivo  
изпитване  върху  очите . Въпреки  че при оценката  на отделни  параметри  
(например  при много  високи  или ниски  стойности  на рН) може  да се 
получи  съществена  информация , следва  да се разгледат  всички  
съществуващи  данни . Всички  сведения  за ефектите  на дадено  вещество  и 
неговите  структурни  аналози  следва  да бъдат  оценени  в процеса  на вземане  
на решение  и следва  да се представи  обосновката  на взетото  решение . На 
първо  място  следва  да се обърне  внимание  на съществуващите  данни  за 
ефектите  на веществото  върху  хора  и животни , а след  това да се оценят  
резултатите  от in vitro  или ех vivo  изпитвания . Във всички  случаи , когато  е 
възможно , следва  да се избягва  провеждането  на in vivo  изпитвания  на 
корозивни  химични  вещества . Факторите , които  се вземат  под внимание  в 
стратегията  на изпитване , включват : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 261
 
Оценка  на съществуващите  данни  за хора  и животни  (стъпка  1).  
Съществуващите  данни  за хора , като например  данни  от клинични  
проучвания , проучвания  върху  работници , описания  на случаи  и/или данни  
от изпитвания  върху  животни  за оценка  на ефекта  върху  очите , следва  да се 
разглеждат  с предимство , защото  те осигуряват  информация , пряко  свързана  
с действието  на веществото  върху  очите . След  това следва  да се оценят  
данните  от проучвания  на кожното  корозивно /дразнещо  действие  при хора  
и/или животни . Опитните  животни  не следва  да се третират  с вещества  с 
известно  корозивно  или изразено  дразнещо  действие  върху  очите . Това  се 
отнася  и за вещества  с корозивно /дразнещо  действие  върху  кожата . Тези  
вещества  следва  да се разглеждат  като корозивни /дразнещи  и за очите . 
Също  така не е необходимо  да се провеждат  in vivo  изпитвания  на 
вещества , за които  съществуват  достатъчно  данни  от предишни  проучвания  
за отсъствие  на очно  дразнещо  или корозивно  действие . 
Анализ  на зависимостта  „структура /активност “ (structure activity relation ­
ships, SAR) ( стъпка  2). Резултатите  от изпитвания  на вещества  с подобна  
химична  структура  следва  да се вземат  под внимание , ако са налице  такива  
данни . Когато  съществуват  достатъчно  данни  за хора  и/или животни , свид­  
етелстващи  за очно  дразнещо /корозивно  действие  на химични  вещества  с 
аналогична  структура  или смеси  от такива  вещества , може  да се приеме , че 
веществото , което  подлежи  на проучване , ще предизвика  същия  ефект . В тези 
случаи  може  да се прецени , че не е необходимо  да се провежда  изпитване . 
Съгласно  стратегията  за последователно  изпитване  негативните  данни  от 
проучвания  на химични  вещества  с аналогична  структура  или смеси  от 
такива  вещества  не се смятат  като достатъчно  основание , за да се приеме  
отсъствие  на корозивен  или дразнещ  ефект  за дадено  химично  вещество . За 
установяване  на потенциално  корозивно /дразнещо  действие  върху  кожата  и 
очите  следва  да се използват  валидирани  и утвърдени  SAR подходи . 
Физикохимични  свойства  и химична  активност  (стъпка  3). Химични  
вещества  с много  високо  или много  ниско  рН (рН ≥ 11,5 или рН ≤ 2,0) 
могат  да предизвикат  силно  изразени  локални  ефекти . Когато  дадено  
химично  вещество  може  да се определи  като корозивно  за кожата  въз 
основа  на високо  или ниско  рН, следва  да се вземе  под внимание  и 
неговият  алкално -киселинен  резерв  (или буферен  капацитет ) (5) (6). 
Когато  данните  за буферния  капацитет  показват , че веществото  може  да 
не е корозивно  за кожата , следва  да се проведе  по-нататъшно  проучване  
за потвърждаване  на това предположение , за предпочитане  посредством  
валидирано  и утвърдено  in vitro  или ех vivo  изпитване  (вж. стъпки  5 и 6). 
Оценка  на други  съществуващи  данни  (стъпка  4). На този етап следва  да се 
оцени  цялата  налична  информация  за системната  токсичност  по дермален  
път на постъпване . Острата  дермална  токсичност  на химичното  вещество  
също  следва  да се вземе  под внимание . Когато  е доказано , че дадено  
химично  вещество  проявява  висока  токсичност  по дермален  път на 
постъпване , може  да се прецени , че не е необходимо  да се изпитва  върху  
опитни  животни . Въпреки  че не винаги  съществува  връзка  между  острата  
дермална  токсичност  и очното  дразнещо /корозивно  действие , може  да се 
приеме , че ако дадено  вещество  проявява  висока  токсичност  по дермален  
път на постъпване , то може  да прояви  висока  токсичност  и при инсталиране  
в очите . Тези  данни  могат  да се разгледат  също  и между  стъпки  2 и 3. 
Резултати  от in vitro или ех vivo изпитвания  (стъпки  5 и 6). Химични  
вещества , които  проявяват  корозивни  или силно  изразени  дразнещи  
свойства  при валидирано  и утвърдено  in vitro  или ех vivo  изпитване  за 
оценка  на кожно  или очно  дразнещо /корозивно  действие  (7)(8), не е необ­  
ходимо  да се изпитват  върху  животни . Може  да се приеме , че тези вещества  
ще предизвикат  подобни  силно  изразени  ефекти  in vivo.  Когато  не 
съществуват  валидирани  и утвърдени  in vitro/ex vivo  изпитвания , стъпки  5 
и 6 се пропускат  и се преминава  директно  към стъпка  7. 
Оценка  на in vivo дразнещото  или корозивно  действие  на химичното  
вещество  върху  кожата  (стъпка  7). Когато  съществуващите  данни  за поте­  
нциалното  очно  дразнещо /корозивно  действие  на дадено  вещество , 
получени  от посочените  по-горе проучвания , не са достатъчни , за да се 
извърши  анализ  и да се стигне  до убедителни  изводи , първо  следва  да се 
оцени  потенциалното  кожно  дразнещо /корозивно  действие  посредством  
метод  В.4 (4) и приложението  към него  (9). Когато  е доказано , че 
веществото  предизвиква  корозивен  ефект  или силно  изразено  дразнене  
върху  кожата , то следва  да се разглежда  като корозивно  за очите , освен  
ако съществуват  други  данни , които  не са в подкрепа  на това заключение . 
Затова  в този случай  не е необходимо  да се извършва  in vivo  изпитване  за 
оценка  на действието  върху  очите . Когато  веществото  не е корозивно  или 
силно  дразнещо  за кожата , in vivo  изпитването  следва  да се извърши . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 262
 
In vivo изпитване  върху  зайци  (стъпки  8 и 9). In vivo  изпитването  за оценка  
на действието  върху  очите  следва  да започне  с изпитване  върху  едно  
опитно  животно . Когато  резултатите  от него  показват , че веществото  
проявява  изразено  очно  дразнещо  или корозивно  действие , не следва  да 
се извършва  по-нататъшно  изпитване . Когато  при първоначалното  
изпитване  не се наблюдават  корозивен  или изразен  дразнещ  ефект , се 
извършва  потвърдително  изпитване  с две допълнителни  животни . 
ПРЕПРАТКИ  
(1) OECD (1996) OECD Test Guidelines Programme:Final Report of the OECD 
Workshop on Harmonization of Validation and Acceptance Criteria for 
Alternative Toxicological Test Methods. Held in Solna, Sweden, 22—24 January 1996 (http://www1.oecd.org/ehs/test/background.htm).
 
(2) OECD (1998) Harmonized Integrated Hazard Classification System for Human 
Health and Environmental Effects of Chemical Substances, as endorsed by the 
28th Joint Meeting of the Chemicals Committee and the Working Party on 
Chemicals, November 1998 (http://www1.oecd.org/ehs/Class/HCL6.htm).  
(3) Worth, A. P. and Fentem, J. H.(1999). A General Approach for Evaluating 
Stepwise Testing Strategies. ATLA 27,161—177.  
(4) Testing method B.4. Acute Toxicity: dermal irritation/corrosion.  
(5) Young, J. R., How, M. J., Walker, A. P., Worth W. M. H. (1988) Classi ­
fication as Corrosive or Irritant to Skin of Preparations Containing Acidic or 
Alkaline Substance Without Testing on Animals. Toxicol.  In Vitro,  2, 
19—26.  
(6) Neun, D. J. (1993) Effects of Alkalinity on the Eye Irritation Potential of 
Solutions Prepared at a Single pH. J. Toxicol. Cut. Ocular Toxicol. 12, 
227—231.  
(7) Fentem, J. H., Archer, G. E. B., Balls, M., Botham, P. A., Curren, R. D., 
Earl, L. K., Edsail, D. J., Holzhutter, H. G. and Liebsch, M.(1998) The ECVAM international validation study on in vitro tests for skin corrosivity. 
2. Results and evaluation by the Management Team. Toxicology in Vitro 12, 
pp. 483—524.
 
(8) Testing Method B.40 Skin Corrosion.  
(9) приложение  to Testing method B.4: A Sequential Testing Strategy for Skin 
Irritation and Corrosion.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 263
 
Фигура  
Стратегия  за изпитване  и оценка  на дразнещо /корозивно  действие  върху  очите
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 264
 
▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 265
 
Б.6. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Забележки : 
Чувствителността  и възможността  на тестовете  да определят  
потенциалните  за човека  кожни  сенсибилизиращи  агенти  се 
считат  за важни  качества  в системата  за класификация  на токс­  
ичността , отнасяща  се до общественото  здраве . 
Не съществува  един -единствен  тест-метод , който  адекватно  да 
идентифицира  всички  вещества , способни  да сенсибилизират  
кожата  на човек , и който  да е подходящ  за всички . 
При избора  на тест следва  да се имат  предвид  фактори  като 
физични  характеристики  на веществото , включително  способ­  
ността  му да премине  през кожата . 
Разработени  са два вида  тестове , използващи  морски  свинчета : 
тестовете  с адювант , в които  състоянието  на алергия  се поте­  
нциира  от разтваряне  или суспендиране  на проучваното  
вещество  в цялостния  адювант  на Freunds (F СА), и тестове  без 
адювант . 
Тестовете  с адювант  изглеждат  по-точни  при предсказване  на 
възможните  кожни  сенсибилизиращи  ефекти  на дадено  
вещество  у човека , отколкото  методите , неизползващи  
адюванта  на Freunds, и затова  са предпочитаните  методи . 
Максимизиращият  тест с морски  свинчета  (GРМТ ) е широко  
употребяван  тест с адювант . Въпреки  че се използват  и някои  
други  методи  за откриване  потенциала  на веществото  да 
предизвика  реакция  на кожна  сенсибилизация , GРМТ  се смята  
за предпочитаната  адювантна  техника . 
Неадювантните  тестове , притежаващи  много  химични  класове  
(предпочитаният  е тестът  на Вuehlег) се смятат  за по-малко  
чувствителни . 
В определени  случаи  може  да има достатъчно  причини  за избор  
на теста  на Вuehlег, който  включва  по-скоро  локално  прил­  
ожение , отколкото  интрадермални  инжекции , използвани  в 
максимизиращия  тест с морски  свинчета  (GРМТ ). При 
използване  на теста  на Вuehlег следва  да се даде  научно  
обяснение . 
Максимизиращият  тест с морски  свинчета  (GРМТ ) и тестът  на 
Вuehlег са описани  в настоящия  метод . Може  да се използват  и 
други  методи , само  ако са добре  потвърдени  и научно  обос­  
новани . 
Ако се получи  положителен  резултат  в стандартен  скриниращ  
тест, проучваното  вещество  може  да бъде  обявено  за поте­  
нциален  сенсибилизиращ  агент  и няма  да бъде  необходимо  
продължаване  на теста  с морски  свинчета . Ако резултатът  в 
този тест е отрицателен , то тестът  с морски  свинчета  следва  
да се продължи  според  процедурата , описана  в настоящия  
метод . 
Вж. също  Общо  въведение , част Б ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 266
 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Кожна  сенсибилизация : (алергичен  контактен  дерматит ) имуно­  
логично  медиирана  кожна  реакция  към вещество . При човека  
отговорите  се характеризират  със сърбеж , еритем , оток , 
папули , везикули , були  или комбинация  от всички  тях. При 
други  видове  реакциите  може  да са различни  и да се 
наблюдава  само  еритем  и оток . 
Индукционна  експозиция : експериментално  излагане  на субекта  
на действието  на проучваното  вещество  с намерението  да се 
индуцира  състояние  на хиперсензитивност . 
Период  на индукция : период  с продължителност  най-малко  една  
седмица , последвал  индукционната  експозиция , през който  може  
да се развие  състояние  на хиперсензитивност . 
Провокационна  експозиция : експериментално  излагане  на 
предварително  третиран  с проучваното  вещество  субект , след  
периода  на ииндукция , с цел определяне  дали  субектът  
реагира  по типа  на хиперсензитивност . 
1.3. РЕФЕРЕНТНИ  ВЕЩЕСТВА  
Чувствителността  и достоверността  на използваните  експериме­  
нтални  техники  следва  да бъдат  проверявани  на всеки  шест  
месеца  с помощта  на вещества , за които  се знае, че притежават  
слаби  до умерени  свойства  да предизвикват  кожна  сенсиб­  
илизация . 
В добре  проведения  тест за слаби /умерено  силни  сенсиб­  
илизиращи  агенти  следва  да се очаква  отговор  от поне  30 % в 
теста  с адювант  и поне  15 % в неадювантния  тест. 
Предпочитат  се следните  вещества : 
САS номера  ЕINECS номера  ЕINECS имена  Общоприети  имена  
101-86-0 202-983-3 2- хексил -З-фенилпроп -2-енал  
(хексилинамалдехид ) 2-хексил -3-фенилпроп -2-енал  
(хексилинамалдехид ) 
149-30-4 205-736-8 бензотиазол -2-тиол  (меркапт­  
обензотиазол ) каптакс  
94-09-7 202-303-5 бензокаин  нордкаин  
Съществуват  обстоятелства , при които  могат  да се използват  и 
други  контролни  вещества , стига  те да отговарят  на горните  
критерии  и за тях да е дадено  съответно  обяснение . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
В началото  опитните  животни  се излагат  на действието  на 
проучваното  вещество  посредством  вътрекожни  инжекции  
и/или епидермално  прилагане  (индукционна  експозиция ). След  
период  на почивка  от 10 до 14 дни (период  на индукция ), по 
време  на който  може  да се развие  имунен  отговор , животните  се 
подлагат  на провокационна  доза. Сравнява  се обхватът  и 
степента  на кожна  реакция  към провокационното  излагане  при 
опитните  животни  с тази, показана  от контролите , които  
претърпяват  същото  третиране  по време  на индукция  и са 
подложени  на провокация . 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДИТЕ  НА ИЗПИТВАНЕ  
Ако се наложи  отстраняване  на проучваното  вещество , това 
следва  да се извърши  с вода  или друг  подходящ  разтворител , 
без да се промени  съществуващият  (наличният ) отговор  или 
целостта  на епидермиса . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 267
 
1.5.1.  Максимизиращ  тест  с морски  свинчета  (GРМТ ) 
1.5.1.1. П о д г о т о в к а 
Здрави  млади , полово  зрели  морски  свинчета  албиноси  се аклим­  
атизират  в продължение  на поне  5 дни преди  теста  към 
лабораторните  условия . Преди  теста  животните  се подбират  
случайно  и се разпределят  в групите  за третиране . Отстраняването  
на козината  става  чрез подстригване , бръснене  или при 
възможност  химическа  депилация , в зависимост  от използвания  
тест-метод . Следва  да се внимава  да не се увреди  кожата . 
Животните  се претеглят  преди  началото  на теста  и в неговия  край . 
1.5.1.2. У с л о в и я з а п р о в е ж д а н е н а т е с т а 
1.5.1.2.1. Опитни  животни  
Обикновено  се използват  лабораторни  породи  от морски  
свинчета  албиноси . 
1.5.1.2.2. Брой  и пол 
Могат  да се използват  мъжки  и/или женски  животни . Ако се 
използват  женски , те следва  да нямат  партньор  и да не са 
бременни . 
Използват  се минимум  по 10 животни  в третираните  групи  и поне  5 
в контролната  група . Ако се използват  по-малко  от 20 опитни  и 10 
контролни  морски  свинчета  и не е възможно  да се направи  изводът , 
че проучваното  вещество  е сенсибилизиращ  агент , силно  се 
препоръчва  тестване  на допълнителен  брой  животни , така че 
общият  брой  да бъде  поне  20 опитни  и 10 контролни  животни . 
1.5.1.2.3. Дозови  нива  
Концентрацията  на проучваното  вещество , използвано  за 
индукционна  експозиция , следва  да бъде  системно  добре  
толерирано  и би следвало  да представлява  най-високата  конце­  
нтрация , която  предизвиква  леко  до умерено  кожно  дразнене . 
Концентрацията , използвана  за провокационно  излагане , следва  
да бъде  най-високата  не предизвикваща  дразнене  доза. При 
необходимост  подходящата  концентрация  може  да се определи  
чрез пилотно  проучване , използващо  две или три животни . За 
тази цел следва  да се отдаде  внимание  (предпочитание ) на 
използването  на животни , третирани  с FСА. 
1.5.1.3. П р о ц е д у р а 
1.5.1.3.1. Индукция  
Ден 0 за третираната  група  
Поставят  се три двойки  вътрекожни  инжекции  с обем  0,1 ml в 
областта  на рамото , което  следва  да се почисти  от козина , така 
че всяко  едно  убождане  от двойката  да лежи  от всяка  страна  на 
срединната  линия . 
Инжекция  1: в отношение  1:1 смес  (об/об) FСA/вода  или физио­  
логичен  разтвор . 
Инжекция  2: проучваното  вещество  в избраната  концентрация , 
поставено  в подходяща  среда . 
Инжекция  3: проучваното  вещество  в избраната  концентрация , 
поставено  в съотношение  1:1 смес  (об/об) FСА/вода  или физио­  
логичен  разтвор . 
В инжекция  3 водноразтворимите  вещества  се разтварят  във 
водната  фаза  преди  смесването  им с FСА. Мастноразтворимите  
или неразтворимите  вещества  се суспендират  в FСА преди  
смесването  им с водната  фаза . Крайната  концентрация  на 
проучваното  вещество  следва  да бъде  еднаква  с използваната  в 
инжекция  2. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 268
 
Инжекции  1 и 2 се поставят  близо  една  до друга , възможно  най- 
близо  до главата , докато  № 3 се поставя  към най-долната  
(каудалната ) част на опитната  област . 
Ден 0 на контролната  група  
Поставят  се три двойки  вътрекожни  инжекции  с обем  0,1 m1 в 
същите  области  както  на третираните  животни . 
Инжекция  1: в отношение  1:1 смес  (об/об) FСА/вода  или физио­  
логичен  разтвор . 
Инжекция  2: неразредена  среда . 
Инжекция  3: съотношение  50 % т/об от средата  в отношение  1:1 
смес  (об/об) FСА/вода  или физиологичен  серум . 
Ден 5—7 на третираната  и контролната  група  
Около  двадесет  и четири  часа преди  локално  (местно ) прил­  
ожената  индукция , ако веществото  не е кожен  дразнител , 
мястото  за опит , след  добро  подстригване  и/или бръснене , се 
третира  с 0,5 ml 10 % натриев  лаурил  сулфат  във вазелин  с 
цел създаване  на местно  дразнене . 
Ден 6—8 на третираната  група  
Мястото  за опита  отново  се почиства  от козина . Филтърна  
хартия  (2 × 4 см), добре  натоварена  с проучваното  вещество  в 
подходяща  среда , се поставя  на опитното  място  и се оставя  в 
тесен  контакт  чрез оклузивна  превръзка  в продължение  на 48 
часа. Изборът  на средата  следва  да се обоснове . Твърдите  
вещества  се пулверизират  и инкорпорират  в подходяща  среда . 
Ако е необходимо , течните  вещества  могат  да се прилагат  
неразредени . 
Ден 6—8 на контролната  група  
Мястото  за опит  се почиства  отново  от козината . Средата  се 
поставя  самостоятелно  по подобен  начин  на опитното  място  и 
се поддържа  в контакт  с помощта  на оклузивна  превръзка  в 
продължение  на 48 часа. 
1.5.1.3.2. Провокация  
Ден 20—22 на третираната  и контролната  група  
Хълбоците  на третираните  и контролните  животни  се почиства  
от козина . Част  от пластир  или цяла  превръзка , натоварена  с 
проучваното  вещество , се прилага  на единия  хълбок  на 
опитното  животно  и при необходимост  част от пластир , 
натоварен  само  със средата , може  да се постави  на другия  
хълбок . Пластирите  се поддържат  в контакт  чрез оклузивни  
превръзки  в продължение  на 24 часа. 
1.5.1.3.3. Наблюдение  и степенуване : третирана  и контролна  група  
— около  21 часа след  премахване  на пластира  мястото  за 
провокация  се почиства  и се подстригва  и/или бръсне  
добре  и при необходимост  се депилира ; 
— около  3 часа по-късно  (приблизително  48 часа след  началото  
на провокационното  прилагане ) се наблюдава  кожната  
реактивност  и данните  се записват  според  степените , 
показани  в допълнението ; 
— около  24 часа след  това наблюдение  се извършва  второ  
(72 часа) и отново  данните  се записват . 
Препоръчва  се сляпото  наблюдение  на опитните  и контролните  
животни . 
Ако е необходимо  да се изяснят  резултатите , получени  по време  
на първата  провокация , следва  да се обсъди  втора  провокация  
(т.е. репровокация ), около  една  седмица  след  първата , при 
възможност  с нова  контролна  група . Повторната  провокация  
може  да се извърши  и с първата  контролна  група . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 269
 
Всички  кожни  реакции , както  и всяко  необичайно  явление , 
включително  системни  реакции , резултат  на индукционни  или 
провокационни  процедури , следва  да се наблюдават  и записват  
според  скалата  за степени  на Маgnusson/Kligman ( вж. 
допълнението ). За да се уточнят  съмнителните  резултати , може  
да се проведат  и други  процедури , като напр . хистопатологично  
изследване , измерване  на дебелината  на кожната  гънка . 
1.5.2.  Тест  на Buehler  
1.5.2.1. П о д г о т о в к а 
Здрави  млади , полово  зрели  морски  свинчета  албиноси  се 
аклиматизират  в продължение  на поне  5 дни преди  теста  към 
лабораторните  условия . Преди  теста  животните  се подбират  
случайно  и се разпределят  в групите  за третиране . 
Отстраняването  на козината  става  чрез подстригване , бръснене  
или при възможност  чрез химическа  депилация , в зависимост  от 
използвания  тест-метод . Следва  да се внимава  да не се увреди  
кожата . Животните  се претеглят  преди  началото  на теста  и в 
неговия  край . 
1.5.2.2. У с л о в и я з а п р о в е ж д а н е н а т е с т а 
1.5.2.2.1. Опитни  животни  
Обикновено  се използват  лабораторни  породи  от морски  
свинчета  албиноси . 
1.5.2.2.2. Брой  и пол 
Могат  да се използват  мъжки  и/или женски  животни . Ако се 
използват  женски , те следва  да нямат  партньор  и да не са 
бременни . 
Използват  се минимум  20 животни  в третираната  група  и поне  
10 в контролната . 
1.5.2.2.3. Дозови  нива  
Концентрацията  на проучваното  вещество , използвано  за 
индукционна  експозиция , следва  да бъде  възможно  най- 
високата  концентрация , която  предизвиква  умерено , но не знач­  
ително  кожно  дразнене . Концентрацията , използвана  за провок­  
ационно  излагане , следва  да бъде  най-високата  непредизвикваща  
дразнене  доза. При необходимост  подходящата  концентрация  
може  да се определи  чрез пилотно  проучване , използващо  две 
или три животни . 
За водноразтворимите  проучвани  вещества  е подходящо  да се 
използва  вода  или недразнещ  разтвор  на сърфактант  като среда . 
За другите  проучвани  вещества  се предпочита  80 % етанол /вода  
за индукцията  и ацетон  за провокацията . 
1.5.2.3. П р о ц е д у р а 
1.5.2.3.1. Индукция  
Ден 0 на третираната  група  
Единият  хълбок  се почиства  от козина  (ниско  подстриган ). 
Пластирът , предназначен  за теста , следва  да бъде  добре  
натоварен  с проучваното  вещество  в подходяща  среда  (изборът  
на средата  следва  да се обоснове ; при необходимост  течните  
вещества  могат  да се прилагат  неразредени ). 
Пластирът  за опита  се поставя  на опитното  място  и се оставя  в 
тесен  контакт  с кожата  чрез оклузивна  превръзка  в продължение  
на 6 часа. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 270
 
Системата  с пластири  за опита  следва  да бъде  оклузивна . 
Подходящо  е използването  на памучен  тампон  — кръгъл  или 
правоъгълен  по форма , с площ  около  4—6 cm  2 . Предпочита  се 
използването  на специални  задържащи  превръзки , с които  да се 
постигне  максимална  оклузия . Ако се използва  бинтоване , е 
възможно  да се наложи  допълнително  излагане  на действието  
на веществото . 
Ден 0 на контролната  група  
Единият  хълбок  се почиства  от козина  (ниско  подстриган ). 
Прилага  се само  средата  по начин , подобен  на описания  за 
третираната  група . Пластирът  за опита  се поставя  на опитното  
място  и се оставя  в тесен  контакт  с кожата  чрез оклузивна  
превръзка  в продължение  на 6 часа. Ако се покаже , че не е 
необходимо  включването  на фалшива  контролна  група , може  
да се използва  началната . 
Ден 6—8 и 13—15 на третираната  и контролната  група  
Извършва  се същият  начин  на прилагане  както  в ден 0, на 
същото  опитно  място  (при необходимост  почистено  от 
козина ), на същия  хълбок  — на ден 6—8 и отново  на ден 
13—15.  
1.5.2.3.2. Провокация  
Ден 27—29 на третираната  и контролната  група  
Нетретираният  хълбок  на третираните  и контролните  животни  
се почиства  от косми  (ниско  подстригване ). Поставя  се част или 
целият  оклузивен  пластир , съдържащ  съответното  количество  
проучвано  вещество  в максимално  недразнеща  концентрация , 
върху  задната  част на нетретирания  хълбок  на третираните  и 
контролните  животни . 
Ако е уместно , се поставя  също  и част или целият  оклузивен  
пластир , натоварен  само  със средата , върху  предната  част на 
нетретирания  хълбок , както  на третираните , така и на 
контролните  животни . Пластирът  се оставя  в тесен  контакт  с 
кожата  чрез подходяща  превръзка  в продължение  на 6 часа. 
1.5.2.3.3. Наблюдение  и степенуване  
— около  21 часа след  премахване  на пластира  мястото  за 
провокация  се почиства  от козина ; 
— около  3 часа по-късно  (приблизително  30 часа след  
прилагане  на пластира  за провокация ) се наблюдава  
кожната  реактивност  и данните  се записват  според  
степените , показани  в допълнението ; 
— около  24 часа след  тридесетте  часа на наблюдение  (около  54 
часа след  прилагане  на пластира  за провокация ) отново  се 
наблюдава  кожната  реактивност , отново  данните  се записват . 
Препоръчва  се сляпото  наблюдение  на опитните  и контролните  
животни . 
Ако е необходимо  да се изяснят  резултатите , получени  по време  
на първата  провокация , следва  да се обсъди  втора  провокация  
(т.е. репровокация ) около  една  седмица  след  първата , при 
възможност  с нова  контролна  група . Повторната  провокация  
може  да се извърши  и с първата  контролна  група . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 271
 
Всички  кожни  реакции , както  и всяко  необичайно  явление , 
включително  системни  реакции , резултат  на индукционни  или 
провокационни  процедури , следва  да се наблюдават  и записват  
според  степенната  скала  на Маgnusson/Kligman ( вж. 
допълнението ). За са се уточнят  съмнителните  резултати , може  
да се проведат  и други  процедури , като напр . хистопатологично  
изследване , измерване  на дебелината  на кожната  гънка . 
2. ДАННИ  (GРМТ  И BUEHLER)  
Данните  следва  да се обобщят  в таблична  форма , показваща  
кожните  реакции  на всяко  едно  животно  при всяко  наблюдение . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  (GРМТ  И ВUEHLER)  
Ако скриниращото  изследване  се проведе  преди  теста  с морски  
свинчета , следва  да се приложи  описанието  или позовавания  
към теста  (напр . изследване  на регионарните  лимфни  възли  
(LLNА), тест за подуване  ушите  на мишките  (МЕЅТ ), 
включващи  подробности  от процедурата , както  и получените  
резултати  за проучваното  и референтните  вещества . 
Доклад  за теста  (GМРТ  и Вuehlег test)  
Докладът  за теста  следва  да включва , по възможност , следната  
информация : 
Опитни  животни : 
— използвана  порода  морски  свинчета ; 
— брой , възраст  и пол на животните ; 
— източник , условия  на отглеждане , хранене  и т.н.; 
— индивидуалното  тегло  на животните  в началото  и в края  на 
теста . 
Условия  за провеждане  на теста : 
— техника  за подготовка  на мястото  за прилагане  на пластира ; 
— подробно  описание  на естеството  на използваните  пластири  
и техники  за прилагането  им; 
— резултати  от пилотно  проучване , даващо  обосновка  на 
използваните  в теста  концентрации  за индукция  и 
провокация ; 
— подробно  описание  на подготовката  на проучваното  
вещество , начина  на прилагане  и отстраняването  му; 
— обосновка  на избора  на среда ; 
— концентрации  на проучваното  вещество  и средата  в стадий  
на индукция  и провокация , както  и общото  количество  
вещество , приложено  при индукцията  и провокацията . 
Резултати : 
— обобщение  на резултатите  от последната  проверка  за чувств­  
ителност  и достоверност  (вж. 1.3), включително  информация  
относно  използваните  вещество , концентрация  и среда ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 272
 
— за всяко  животно , включително  скала  за степенуване ; 
— подробно  описание  на същността  и степента  на наблюда­  
ваните  ефекти ; 
— всички  хистопатологични  резултати . 
Обсъждане  на резултатите . 
Изводи . 
4. ПРЕПРАТКИ  
Този  метод  е еднакъв  с OECD ТG 406.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 273
 
Допълнение  
ТАБЛИЦА  
Степенна  скала  на Маgnusson/Kligman за оценка  на реакциите  при 
провокация  спластир , натоварен  с отровни  вещества  
0 = няма  видими  промени  
1 = дискретна  или на петна  еритема  
2 = умерена  и конфлуираща  еритема  
3 = интензивна  еритема  и оток ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 274
 
Б.7. 28-ДНЕВНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА ОРАЛНАТА  ТОКСИЧНОСТ  ПРИ  
ГРИЗАЧИ  С ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
407 на ОИСР  (2008 г.). Първоначалното  Указание  за изпитване  407 е 
прието  през 1981 г. През  1995 г. е приета  преразгледана  версия , за 
получаване  на допълнителна  информация  с източник  използваното  
при изследването  животно , по-специално  относно  невротоксичността  
и имунотоксичността . 
2. През  1998 г. ОИСР  стартира  с висок  приоритет  дейност  по преразг­  
леждане  на съществуващите  Указания  за изпитване  и по разработване  
на нови  Указания  за изпитване  за скрининг  и изпитвания  за поте­  
нциални  нарушители  на функциите  на ендокринната  система  (8). 
Един  от елементите  на дейността  е да се актуализират  съществуващите  
указания  на ОИСР  за „28-дневно  изследване  на оралната  токсичност  
при гризачи  с повтаряща  се доза“ (TG 407) с параметри , подходящи  за 
установяване  на ендокринна  активност  на изпитваните  химикали . Тази  
процедура  премина  през обширна  международна  програма  за изпитване  
на относимостта  и практическата  приложимост  на допълнителните  
параметри , на характеристиките  на тези параметри  за химикали  с 
(анти )естрогенна , (анти )андрогенна  и (анти )тиреоидна  активност , на 
вътрешно - и междулабораторната  възпроизводимост , и на взаимоде­  
йствието  между  новите  параметри  с параметрите , изисквани  по 
предходното  TG 407. Полученият  при това голям  обем  данни  е комп­  
илиран  и му е извършена  подробна  оценка  в широкообхватен  доклад  на 
ОИСР  (9). Настоящият  актуализиран  метод  за изпитване  Б.7. (като 
равностоен  на TG 407) е крайният  продукт  от придобития  опит  и пост­  
игнатите  резултати  по време  на международната  програма  за 
изпитване . Настоящият  метод  за изпитване  позволява  определени  
ендокринно  медиирани  ефекти  да бъдат  поставени  в един  контекст  с 
други  токсикологични  ефекти . 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
3. При извършването  на оценка  и изчисляването  на токсичните  
характеристики  на даден  химикал  определянето  на оралната  токсичност  
с повтарящи  се дози  може  да се извърши  след  получаване , чрез 
изпитване  за остра  токсичност , на предварителна  информация  
относно  токсичността . Настоящият  метод  за изпитване  има за цел да 
проучи  последиците  върху  много  широк  спектър  от потенциални  
прицелни  обекти  на токсичността . Той предоставя  информация  за 
възможните  рискове  за здравето , произтичащи  по всяка  вероятност  от 
повтарящата  се експозиция  за относително  кратък  период  от време , 
включително  въздействие  върху  нервната , имунната  и ендокринната  
системи . По отношение  на тези конкретни  крайни  точки  той следва  
да идентифицира  химикали  с невротоксичен  потенциал , което  може  
да даде  основание  за по-нататъшни  по-задълбочени  проучвания  на 
този аспект , и химикали , които  оказват  въздействие  върху  физио­  
логията  на щитовидната  жлеза . Той може  също  да осигури  данни  за 
химикали , които  оказват  влияние  върху  мъжките  и/или женските  
репродуктивни  органи  при млади  полово  зрели  животни  и може  да 
даде  показания  за имунологични  ефекти . 
4. Резултатите  от настоящия  метод  за изпитване  Б.7. следва  да се 
използват  за идентифициране  на опасности  и за оценка  на риска . 
Резултатите , получени  от свързаните  с жлезите  с вътрешна  секреция  
параметри , следва  да се разглеждат  в контекста  на „Концептуалната  
рамка  на ОИСР  за изпитване  и оценка  на химикали , нарушаващи  
функциите  на ендокринната  система “ (11). Методът  включва  
основното  изследване  на токсичността  с повтарящи  се дози , което  
може  да се използва  за химикали , при които  90-дневно  изпитване  не 
е оправдано  (напр . когато  производственият  обем  не надвишава  
определени  граници ) или като предварително  проучване  преди  
дългосрочно  изследване . Продължителността  на експозицията  следва  
да е 28 дни. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 275
 
5. Международната  програма , изпълнена  с оглед  валидирането  на 
параметри , които  позволяват  потенциално  установяване  на ендокринна  
активност  на изпитван  химикал , показа , че качеството  на данните , 
получени  чрез настоящия  метод  Б.7., зависят  много  от опита  на 
лабораторията , извършила  изследването . Това  се отнася  по-специално  
за хистопатологичното  определяне  на циклични  промени  в женските  
репродуктивни  органи  и за определянето  на теглото  на малките  
хормонално  зависими  органи , чиято  дисекция  е трудна . Разработени  
са указания  относно  хистопатологията  (19). Те са на разположение  на 
публичния  уебсайт  на ОИСР  за указания  за изпитване . Предназначени  
са да подпомагат  патолозите  при техните  изследвания  и да допринасят  
за повишаването  на чувствителността  на анализа . Бяха  открити  
множество  различни  параметри , които  са показатели  за свързана  с 
ендокринната  система  токсичност , и които  бяха  включени  в метода  
за изпитване . Параметри , за които  наличните  данни  бяха  недостатъчни  
за доказване  на полезност , или при които  липсваха  убедителни  дока­  
зателства  в програмата  на валидиране  на способността  им за подп­  
омагане  откриването  на нарушители  на функциите  на ендокринната  
система , се предлагат  като незадължителни  крайни  точки  (вж. 
допълнение  2). 
6. Въз основа  на данните , получени  в процеса  на валидиране , трябва  да се 
подчертае , че чувствителността  на този анализ  не е достатъчна  за да се 
идентифицират  всички  вещества  с (анти )андрогенни  или 
(анти )естрогенни  начини  на действие  (9). Методът  за изпитване  не се 
извършва  в жизнен  стадий , който  е най-чувствителен  към нарушения  
на функциите  на ендокринната  система . Въпреки  това по време  на 
процеса  на валидиране  методът  за изпитване  идентифицира  вещества , 
слабо  и силно  засягащи  функцията  на щитовидната  жлеза , силно  и 
умерено  ендокринно  активни  вещества , действащи  чрез естрогенни  
или андрогени  рецептори , но в повечето  случаи  не е успял  да идент­  
ифицира  ендокринно  активни  вещества , които  слабо  засягат  
естрогенните  или андрогени  рецептори . Поради  това той не може  да 
бъде  описан  като скринингов  анализ  на ендокринна  дейност . 
7. Следователно , липсата  на ефекти , свързани  с тези начини  на действие , 
не може  да бъде  приета  като доказателство  за липсата  на ефект  върху  
ендокринната  система . Следователно  по отношение  на ендокринно  
медиираните  ефекти  охарактеризирането  на веществата  не следва  да 
се извършва  въз основа  единствено  на резултатите  от настоящия  
метод  за изпитване , а да се използват  в подход , основан  на тежестта  
на доказателствата , включващ  всички  съществуващи  данни  за даден  
химикал  за характеризиране  на потенциална  ендокринна  активност . 
По тази причина  вземането  на регулаторни  решения  по отношение  на 
ендокринната  активност  (охарактеризиране  на вещества ) следва  да бъде  
подход , разчитащ  на широка  основа , а не само  доверяващ  се на 
резултатите  от прилагането  на настоящия  метод  за изпитване . 
8. Възприето  е всички  процедури , свързани  с животни , да съответстват  на 
местните  стандарти  за грижи  за животните ; описанията  на грижите  и 
третирането , изложени  по-долу , представляват  минимални  стандарти  за 
изпълнение  и се заменят  от местните  разпоредби , когато  последните  са 
по-строги . По-нататъшни  указания  за хуманното  отношение  към 
животните  се дават  от ОИСР  (14).  
9. Определенията  са дадени  в допълнение  1. 
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
10. Изпитваният  химикал  се прилага  всекидневно  през устата  в постепенни  
дози  към няколко  групи  от опитни  животни , по едно  ниво  на доза за 
група  за период  от 28 дни. По време  на периода  на прилагане  
животните  се наблюдават  отблизо  — всеки  ден — за признаци  на 
токсичност . Животните , които  умират  или са подложени  на евтаназия  
по време  на изпитването , се аутопсират , а при завършване  на 
изпитването  преживелите  животни  се подлагат  на евтаназия  и също  
се аутопсират . 28-дневното  изследване  предоставя  информация  
относно  въздействията  от повтаряща  се орална  експозиция  и може  да 
покаже  необходимост  от допълнителни  дългосрочни  изследвания . То ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 276
 
може  да даде  информация  и за избора  на концентрации  за по- 
дългосрочни  изследвания . Данните , получени  при прилагане  на 
метода  за изпитване , следва  да дават  възможност  за охарактеризиране  
на токсичността  на изследвания  химикал , за посочване  на взаим­  
овръзката  между  дозата  и отговора , и за определяне  на нивото  без 
наблюдаван  неблагоприятен  ефект  (NOAEL).  
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
11. Плъховете  са предпочитаният  вид гризачи , въпреки  че могат  да се 
използват  и други  видове . Ако параметрите , определени  в рамките  на 
настоящия  метод  за изпитване  Б.7., са изследвани  при гризач  от друг  
вид, следва  да бъде  дадена  подробна  обосновка . Въпреки  че е 
приемливо  от биологична  гледна  точка  други  видове  да реагират  на 
токсични  вещества  по начин , подобен  на този при плъховете , 
използването  на по-малки  видове  може  да доведе  до увеличено  
вариране  поради  техническите  предизвикателства  при дисекция  на 
по-малки  органи . В международната  програма  за валидиране  за 
откриване  на нарушители  на функциите  на ендокринната  система  
плъхът  е единственият  използван  вид. Следва  да се използват  здрави  
млади  полово  зрели  животни  от обичайно  използваните  за лабораторни  
изследвания  породи . Женските  индивиди  следва  да не са раждали  и да 
не са бременни . Дозирането  следва  да започва  колкото  е възможно  по- 
скоро  след  отбиването  на животното  и при всички  случаи  преди  то да е 
навършило  девет  седмици . При започване  на изследването  колебанията  
в теглото  на използваните  животни  следва  да бъдат  минимални  и да не 
превишават  20 % от средното  за всеки  пол тегло . Ако изследване  за 
повтаряща  се орална  доза се провежда  като като предварително  
проучване  преди  по-дългосрочно  изследване , предпочита  се и в двете  
изследвания  да се използват  животни  от една  и съща  порода  и 
източник . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
12. Всички  процедури  трябва  да са в съответствие  с местните  стандарти  за 
полагане  на грижи  за лабораторни  животни . Температурата  в опитното  
помещение  с животните  трябва  да бъде  22 °C (± 3 °C). Въпреки  че 
относителната  влажност  следва  да бъде  най-малко  30 % и е препоръч­  
ително  тя да не надвишава  70 %, освен  по време  на почистване  на 
стаята , целта  е относителната  влажност  да се поддържа  в интервала  
50—60 %. Осветлението  трябва  да бъде  изкуствено , като последоват­  
елността  е 12 часа светлина , 12 часа тъмнина . За храненето  могат  да се 
използват  обичайните  лабораторни  хранителни  режими  с неограничен  
достъп  до вода  за пиене . Изборът  на хранителен  режим  може  да бъде  
повлиян  от нуждата  да се осигури  подходящо  смесване  с изпитван  
химикал , когато  прилагането  му е по настоящия  метод . Животните  се 
настаняват  групово , в малки  групи  от един  и същи  пол; животните  
могат  да се настаняват  отделно , ако това е научно  обосновано . При 
групово  настаняване  в клетки  не следва  да има повече  от пет животни  
в клетка . 
13. Храната  следва  да бъде  редовно  анализирана  за наличието  на 
замърсители . Проба  от хранителния  режим  трябва  да се съхранява  до 
окончателното  изготвяне  на доклада . 
Подготовка  на животните  
14. Здрави  млади  полово  зрели  животни  се определят  на произволен  
принцип  за контролните  и опитните  групи . Клетките  трябва  да бъдат  
подредени  по такъв  начин , че възможните  ефекти  в резултат  на мест­  
оположението  на клетката  да бъдат  сведени  до минимум . На животните  
се дава уникална  идентификация  и се държат  в техните  клетки  поне  пет 
дни преди  началото  на изследването , за да се даде  възможност  за 
аклиматизиране  към лабораторните  условия . 
Подготовка  на дозите  
15. Изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранене  през сонда , чрез 
хранителния  режим  или чрез питейната  вода . Начинът  на прилагане  
през устата  се определя  в зависимост  от целта  на изследването  и 
физичните /химичните /токсикокинетичните  свойства  на изпитвания  
химикал . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 277
 
16. Когато  е необходимо , изпитваният  химикал  е в разтвор  или в суспензия  
в подходящ  носител . Препоръчва  се, когато  е възможно , най-напред  да 
се прецени  дали  може  се използва  воден  разтвор /суспензия , след  това 
да се прецени  за разтвор /емулсия  в масло  (напр . царевично  олио ), а 
след  това — за разтваряне  в други  носители . За носители , различни  от 
вода , следва  да се познават  токсичните  характеристики  на носителя . 
Трябва  да бъде  определена  стабилността  на изпитвания  химикал  в 
носителя . 
ПРОЦЕДУРА  
Брой  и пол на животните  
17. За всяко  ниво  на доза следва  да се използват  най-малко  10 животни  
(пет женски  и пет мъжки ). Ако е планирана  междувременна  евтаназия  
на животни  преди  завършването  на изследването , броят  се увеличава  с 
броя  на животните , които  е планирано  да бъдат  подложени  на 
евтаназия  преди  завършването  на изследването . Следва  да се разгледа  
възможност  за допълнителна  сателитна  група  от 10 животни  (по пет от 
двата  пола ) в контролната  група  и в групата  с най-висока  доза, за 
наблюдение  на случаи  на обратимост , персистиране  или забавяне  на 
токсичните  ефекти , най-малко  в продължение  на 14 дни след  
третирането . 
Дозиране  
18. Обикновено  следва  да се използват  най-малко  три опитни  и една  
контролна  групи , но ако от оценката  на други  данни  се установи , че 
не се очакват  ефекти  при доза от 1 000 mg на kg телесно  тегло  на ден, 
може  да бъде  проведено  изпитване  при пределна  концентрация . Ако 
няма  достъпни  подходящи  данни , може  да се проведе  изследване  за 
определяне  на обхвата  (с животни  от същата  порода  и източник ), 
което  да подпомогне  определянето  на използваните  дози . С изключение  
на третиране  с изпитвания  химикал , животните  в контролна  група  
трябва  да бъдат  отглеждани  по идентичен  начин  на този, при 
животните  от изпитвана  група . Ако за прилагане  на изпитвания  
химикал  се използва  носител , контролната  група  трябва  да получава  
най-голямото  използвано  количество  носител . 
19. Нивата  на доза следва  да се подбират , като се имат  предвид  всички  
достъпни  токсикологични  и токсикокинетични  данни  за изпитвания  
химикал  или за свързани  с него  химикали . Целта  при избор  на най- 
високото  ниво  на доза е индуциране  на токсични  ефекти , но не смърт  
или силно  страдание . След  това следва  да се подбират  постепенно  
намаляващи  нива  на доза с оглед  установяване  на всеки  един  свързан  
с дозата  отговор  и на NOAEL. За определяне  на последователно  
намаляващите  нива  на доза в повечето  случаи  е най-подходящо  всяка  
доза да намалява  два до четири  пъти  спрямо  най-близката  по-висока  
доза, а добавянето  на допълнителна  четвърта  изпитвана  група  често  е 
за предпочитане  пред  използването  на твърде  големи  интервали  между  
дозите  (напр . намаление  повече  от 10 пъти ). 
20. В присъствието  на наблюдавана  обща  токсичност  (например  
намаляване  на телесното  тегло , ефекти  върху  черния  дроб , сърцето , 
белите  дробове , бъбреците  и др.) или други  промени , които  може  да 
не са токсични  реакции  (напр . редуциран  хранителен  прием , увеличен  
черен  дроб ), наблюдаваните  въздействия  върху  имунни , неврологични  
и ендокринни  чувствителни  крайни  точки  следва  да се интерпретират  
предпазливо . 
Изпитване  при пределна  концентрация  
21. Ако изпитване  при ниво  на доза от поне  1 000 mg на kg телесно  тегло  
дневно  или — при прилагане  с хранителен  режим  или с питейна  вода  
— при еквивалентна  концентрация  в храната  или питейната  вода  
(основаваща  се на определяне  на телесното  тегло ), използвайки  
процедурите , описани  за настоящото  изследване , не предизвиква  
видими  токсични  ефекти  и ако не се очаква  токсичност , изхождайки  
от данните  за структурно  свързани  химикали , то тогава  може  да не е 
необходимо  пълно  изследване  с използване  на три нива  на доза. 
Изпитването  при пределна  концентрация  се прилага , с изключение  на 
случаи , при които  експозиция  на хора  подсказва  нуждата  от използване  
на по-високо  ниво  на доза. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 278
 
Прием  на дозите  
22. Животните  се дозират  с изпитвания  химикал  ежедневно  в продължение  
на 7 дни всяка  седмица  за период  от 28 дни. Когато  изпитваният  
химикал  се прилага  чрез хранене  през сонда , това следва  да става  
чрез еднократна  доза за животното  през стомашна  тръба  или 
подходяща  интубационна  канюла . Максималният  обем  течност , който  
може  да бъде  въведен  еднократно , зависи  от телесното  тегло  на 
изпитваното  животно . Обемът  не следва  да превишава  1 ml на 100 g 
телесно  тегло , освен  в случаите , когато  се прилагат  водни  разтвори , 
при които  могат  да бъдат  използвани  2 ml на 100 g телесно  тегло . С 
изключение  на дразнещи  или корозивни  химикали , при които  обик­  
новено  се проявяват  изострени  ефекти  при по-високи  концентрации , 
варирането  в изпитвания  обем  трябва  да бъде  минимизирано  чрез 
регулиране  на концентрацията  с оглед  осигуряване  на постоянен  
обем  при всички  нива  на доза. 
23. За химикали , които  се прилагат  чрез хранителен  режим  или вода  за 
пиене , е важно  да се гарантира , че количеството  използван  изследван  
химикал  не въздейства  върху  нормалното  хранене  и водния  баланс . 
Когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранителен  режим , 
могат  да бъдат  използвани  постоянна  хранителна  концентрация  (ррm) 
или постоянно  ниво  на доза спрямо  телесното  тегло  на животното ; 
използваната  алтернатива  трябва  да бъде  посочена . За химикал , 
прилаган  чрез хранене  през сонда , дозата  трябва  да бъде  давана  
приблизително  по едно  и също  време  всеки  ден и да бъде  регулирана  
при необходимост  за поддържане  на постоянно  ниво  на доза спрямо  
телесното  тегло  на животното . При използване  на изследване  с 
повтаряща  се доза като предварително  проучване  преди  дългосрочно  
изследване , следва  да се използва  подобен  хранителен  режим  и в двете  
изследвания . 
Наблюдения  
24. Периодът  на наблюдение  е 28 дни. Животните  от сателитната  група , 
определени  за последващи  наблюдения , следва  да не бъдат  третирани  
най-малко  през следващите  14 дни, за да се открият  късно  появили  се 
ефекти , или персистиране , или възстановяване  от токсични  ефекти . 
25. Общи  клинични  наблюдения  следва  да бъдат  извършвани  поне  един  
път дневно , за предпочитане  по едно  и също  време  всеки  ден и 
имайки  предвид  пиковия  период  за поява  на очакваните  ефекти  след  
дозиране . Здравословното  състояние  на животните  следва  да се 
записва . Поне  два пъти  дневно  всички  животни  се наблюдават  за забо­  
ляемост  и смъртност . 
26. За всички  животни  следва  да се провеждат  подробни  клинични  набл­  
юдения  – веднъж  преди  първата  експозиция  (за да се даде  възможност  
за интрасубектни  сравнения ) и най-малко  веднъж  седмично  след  това. 
Тези  наблюдения  следва  да се извършват  извън  клетката  на 
настаняване , на стандартна  площадка , за предпочитане  всеки  път по 
едно  и също  време . Тези  наблюдения  следва  да се описват  внимателно , 
за предпочитане  с използване  на точкови  системи , изрично  определени  
от лабораторията , извършваща  изпитвания . Следва  да се положат  
усилия , за да се гарантира , че колебанията  в условията  на изпитването  
са минимални , както  и че наблюденията  се извършват  за предпочитане  
от хора , неинформирани  за изпитването . Отбелязваните  признаци  
следва  да включват , без да се ограничат  до, промяна  в кожата , 
козината , очите , лигавиците , поява  на секреция  и екскреция , както  и 
автономна  активност  (напр . сълзене , пилоерекция , промяна  в 
големината  на зениците , необичаен  начин  на дишане ). Следва  да се 
записват  също  и изменения  в походката , стойката  и отговора  при 
боравене , както  и наличието  на клонични  или тонични  движения , 
стереотипно  (например  прекомерно  поддържане  на външния  вид, 
повтарящо  се обикаляне  в кръг ) или необичайно  поведение  
(например  самоосакатяване , вървене  назад ) (2).  
27. По време  на четвъртата  седмица  на експозиция  следва  да се проведе  
оценка  на сензорната  реактивност  към различни  видове  стимули  (2) 
(напр . слухови , зрителни  и проприоцептивни ) (3)(4)(5), оценка  на 
силата  на захвата  (6) и на двигателната  активност  (7). Допълнителна  
подробна  информация  по процедурите , които  могат  да бъдат  следвани , 
е дадена  в съответните  препратки . Могат  обаче  да се използват  и 
алтернативни  процедури , различни  от посочените  в препратките . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 279
 
28. Функционалните  наблюдения , проведени  по време  на четвъртата  седмица  
на експозиция , могат  да бъдат  пропуснати , ако изследването  се извършва  
като предварително  към последващо  (90-дневно ) изследване  за 
субхронична  токсичност . В този случай  функционалните  наблюдения  
следва  да бъдат  включени  в това последващо  изследване . От друга  
страна , наличието  на данни  от функционални  наблюдения  от изследването  
с повтарящи  се дози  могат  да подобрят  възможността  за избор  на нива  на 
доза за последващо  изследване  за субхронична  токсичност . 
29. По изключение , функционалните  наблюдения  могат  също  да се 
избегнат  за групи , които  иначе  показват  признаци  на токсичност  в 
размер , който  значително  би попречил  на извършването  на функцион­  
алното  изпитване . 
30. При аутопсията  като опция  може  да бъде  определен  естралният  цикъл  
на всички  животни  от женски  пол, чрез вземане  на вагинални  намазки . 
Тези  наблюдения  предоставят  информация  относно  етапа  на естралния  
цикъл  при умъртвяването  и допринасят  за хистологичната  оценка  на 
тъкани , чувствителни  към естроген  [вж. указанията , отнасящи  се за 
хистопатологията  (19)].  
Телесно  тегло  и консумация  на храна /вода  
31. Теглото  на всички  животни  следва  да се измерва  поне  един  път в 
седмицата . Консумацията  на храна  се измерва  най-малко  един  път 
седмично . Ако изпитваният  химикал  се прилага  чрез водата  за пиене , 
най-малко  един  път в седмицата  се измерва  и консумацията  на вода . 
Хематология  
32. В края  на периода  на изпитването  следва  да се извършат  следните  
хематологични  изследвания : хематокрит , концентрации  на хемоглобин , 
брой  на еритроцитите , ретикулоцити , общ и диференциален  брой  на 
левкоцити , брой  на тромбоцитите , както  и измерване  на времето  на 
съсирване /потенциала  за съсирване  на кръвта . Други  определяния , 
които  следва  да се извършат  ако изпитваният  химикал  или неговите  
предполагаеми  метаболити  имат , или се предполага  че имат , окисл­  
ителни  свойства , включват  концентрация  на метхемоглобин  и телца  
на Heinz.  
33. Кръвните  проби  следва  да се вземат  от избран  обект  непосредствено  
преди  или като част от процедурата  по умъртвяване  на животните , като 
се съхраняват  при подходящи  условия . Животните  следва  бъдат  
оставени  гладни  през нощта  преди  умъртвяването  ( 1 ). 
Клинична  биохимия  
34. Клинични  биохимични  изследвания  за проучване  на основните  токсични  
ефекти  върху  тъканите , и по-специално  върху  бъбреците  и черния  дроб , 
следва  да се извършват  върху  кръвни  проби , получени  от всички  животни  
непосредствено  преди  или като част от процедурата  за умъртвяване  на 
животните  (независимо  от животните , намерени  в терминално  състояние  
и/или умъртвени  преди  прекратяването  на изследването ). Изследванията  
на плазма  и серум  следва  да включват  натрий , калий , глюкоза , общ 
холестерол , уреа, креатинин , общо  белтъци  и албумин , поне  два ензима , 
показателни  за хепатоцелуларни  ефекти  (като аланинаминотрансфераза , 
аспартатаминотрансфераза , алкална  фосфатаза , гама -глутамилтрансп­  
ептидаза  и глутаматдехидрогеназа ). Измерванията  за допълнителни  
ензими  (от чернодробен  и друг  произход ) и билирубин  могат  да дадат  
полезна  информация  при определени  обстоятелства . 
35. По избор  през последната  седмица  от изследването  може  да се направят  
следните  изследвания  на урината , като се използва  събраният  за 
определено  време  обем  урина ; външен  вид, обем , осмолалност  или относ­  
ителна  плътност , рН, белтъци , глюкоза  и кръв /кръвни  клетки . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 280  
( 1 ) За редица  измервания  на серума  и плазмата , и най-вече за глюкозата , се 
предпочита  гладуване  през нощта  преди  измерването . Основната  причина  за това 
предпочитание  е, че нарасналата  вариация , която  неминуемо  би последвала  ако не 
се прилага  гладуване , би могла  да замаскира  по-трудно  доловими  ефекти  и да 
затрудни  интерпретирането . От друга  страна  обаче , гладуването  през нощта  може  
да въздейства  върху  общия  метаболизъм  на животните , и по-специално  при 
изследване  на храненето  може  да наруши  дневната  експозиция  на изследвания  
химикал . Ако се възприеме  нощно  гладуване , клиничните  биохимични  
определяния  следва  да се извършат  след  провеждането  на функционално  набл­  
юдение  през седмица  4 от изследването .
 36. Като  допълнение  следва  да бъдат  разгледани  изследвания  на плазмени  
и серумни  маркери  за основните  увреждания  на тъканите . Други  
определяния , които  следва  да се проведат , ако известните  свойства  на 
изпитвания  химикал  могат  да повлияят  или се предполага  че влияят  на 
свързаните  метаболитни  профили , са калций , фосфати , триглицериди , 
специфични  хормони  и холинестераза . Те следва  да бъдат  идент­  
ифицирани  за химикалите  от определени  класове  или въз основа  на 
всеки  отделен  случай . 
37. Въпреки  че в международната  оценка  на свързаните  с жлезите  с 
вътрешна  секреция  крайни  точки  не са идентифицирани  ясни  
предимства  за определянето  на тиреоидни  хормони  (T  3 , T  4 ) и 
стимулиращ  щитовидната  жлеза  хормон  (TSH), може  да бъде  от 
полза  да се съхраняват  пробите  от плазма  или серум  за измерване  на 
T 3 , T  4 и TSH (по избор ) ако има показания  за въздействие  върху  
хипофизно -тиреоидната  ос. Тези  проби  могат  да бъдат  замразени  при 
– 20 °C за съхранение . Следните  фактори  могат  да повлияят  на 
варирането  и на абсолютните  концентрации  при определянето  на 
хормони : 
— времето  на умъртвяване , поради  дневните  колебания  в конце­  
нтрацията  на хормони  
— методът  на умъртвяване , за да се избегне  ненужен  стрес  за 
животните , който  може  да повлияе  на концентрациите  на хормони  
— комплектите  за изпитване  за определяне  на хормони , които  могат  да 
се различават  по стандартните  си криви . 
Окончателната  идентификация  на тиреоидно  активни  химикали  е по- 
надеждна  чрез хистопатологичен  анализ , отколкото  чрез нива  на 
хормони . 
38. Пробите  от плазма , специално  предназначени  за определяне  на 
хормони , следва  да бъдат  получени  в сравними  периоди  през деня . 
Препоръчва  се да се разгледа  възможността  за определяне  на T 3 , T 4 
и TSH, инициирано  въз основа  на изменения  в тиреоидната  хистопат­  
ология . Числовите  стойности , получени  при анализа  на концентрации  
на хормони , се различават  при употребата  на различни  търговски  
комплекти  за анализ . Следователно , може  да е невъзможно  да се предо­  
ставят  критерии  за параметрите , основаващи  се на единни  данни  за 
минали  периоди . Като  алтернатива , лабораториите  следва  да се 
стремят  да запазят  контролните  коефициенти  на вариация  под 25 за 
T 3 и T 4 и под 35 за TSH. Всички  концентрации  следва  да бъдат  
записвани  в ng/ml.  
39. Ако базовите  данни  за минали  периоди  са недостатъчни , следва  да се 
разгледа  възможност  за определяне  на хематологичните  и клиничните  
биохимични  променливи  преди  началото  на дозирането  или за предп­  
очитане  в набор  от животни , които  не са включени  в опитните  групи . 
ПАТОЛОГИЯ  
Макроскопска  аутопсия  
40. Всички  животни , подложени  на изследване , са обект  на цялостна , 
подробна  макроскопска  аутопсия , която  включва  внимателно  
изследване  на външната  повърхност  на тялото , всички  отвори  и 
черепната , гръдната  и коремната  кухини  и тяхното  съдържание . 
Черният  дроб , бъбреците , надбъбречните  жлези , тестисите , епидид­  
имите , простатата  + семенните  мехурчета  с коагулиращите  жлези  като 
цяло , тимусът , далакът , мозъкът  и сърцето  на всички  животни  
(независимо  от животните , намерени  в терминално  състояние  и/или 
умъртвени  преди  прекратяването  на изследването ) следва  да се 
почистят  от полепналите  по тях тъкани , когато  е целесъобразно , и 
след  дисекцията  колкото  е възможно  по-скоро  да се измери  тяхното  
мокро  тегло , за да се избегне  изсъхване . Трябва  да се внимава  при 
почистване  на простатата  и семенните  мехурчета  с коагулиращите  
жлези , за да се избегне  пункция  на изпълнените  с течност  семенни  
мехурчета . Като  алтернатива , семенните  мехурчета  и простатата  
могат  да бъдат  почистени  и претеглени  след  фиксирането . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 281
 
41. В допълнение , две други  тъкани  могат  като опция  да бъдат  претеглени  
възможно  най-скоро  след  дисекцията , за да се избегне  изсъхването : 
двойката  яйчници  (мокро  тегло ) и матката , включително  шийката  
(указания  за отстраняване  и подготовка  на маточните  тъкани  за 
измерване  на теглото  се предоставят  в ОИСР  TG 440 (18).  
42. Теглото  на щитовидната  жлеза  (като опция ) би могло  да се определи  
след  фиксирането . Почистването  също  следва  да се осъществи  много  
внимателно  и само  след  фиксиране , за да се избегне  увреждане  на 
тъканите . Увреждането  на тъканите  може  да постави  под съмнение  
хистопатологичния  анализ . 
43. Следните  тъкани  следва  да бъдат  консервирани  в среда  за фиксиране , 
най-подходяща  както  за вида  тъкан , така и за очакваното  последващо  
хистопатологично  изследване  (вж. точка  47): всички  макроскопски  
увреждания , мозък  (представителните  области , включително  главния  
мозък , малкия  мозък  и моста ), гръбначен  мозък , очи, стомах , тънко  и 
дебело  черво  (включително  Пайеровите  плаки ), черен  дроб , бъбреци , 
надбъбречни  жлези , далак , сърце , тимус , щитовидна  жлеза , трахея  и 
бели  дробове  (консервирани  чрез инфлация  с фиксатор  и последващо  
потапяне ), полови  жлези  (тестиси  и яйчници ), допълнителни  полови  
органи  (матка  и шийка , епидидими , простата  + семенни  мехурчета  с 
коагулиращите  жлези ), влагалище , пикочен  мехур , лимфни  възли  
[освен  разположеният  най-близо  до средата  на тялото  дрениращ  възел  
следва  да бъде  взет още един  лимфен  възел  в съответствие  с опита  на 
лабораторията  (15)],  периферен  нерв  (седалищен  или голямопищялен ), 
за предпочитане  в непосредствена  близост  до мускула , скелетен  мускул  
и кост с костен  мозък  (срез от костен  мозък  или, като алтернатива , 
костномозъчен  аспират , прясно  фиксиран ). Препоръчва  се тестисите  
да бъдат  фиксирани  чрез потапяне  във фиксатор  на Bouin или модиф­  
ициран  фиксатор  на Davidson (16) (17). Tunica albuginea трябва  да бъде  
леко  пробита  на неголяма  дълбочина  в двата  края  на органа  с игла , за 
да се позволи  бързото  проникване  на фиксатора . Клиничните  и другите  
находки  могат  да посочат  необходимостта  от изследвания  на допълн­  
ителни  тъкани . Също  така всички  органи , които  на основата  на 
познатите  свойства  на изпитвания  химикал  се считат  за вероятни  
прицелни  органи , следва  да бъдат  консервирани . 
44. Следните  тъкани  могат  да предоставят  ценни  показания  за свързани  с 
ендокринната  система  последици : Полови  жлези  (яйчници  и тестиси ), 
допълнителни  полови  органи  (матка , включително  шийка , епидидими , 
семенни  мехурчета  с коагулиращите  жлези , локализирана  дорзол­  
атерално  и вентрално  простата ), влагалище , хипофиза , мъжка  млечна  
жлеза , щитовидна  жлеза  и надбъбречна  жлеза . Измененията  в мъжките  
млечни  жлези  не са достатъчно  документирани , но този параметър  
може  да бъде  много  чувствителен  към вещества  с естрогенно  
действие . Наблюдението  на органи /тъкани , които  не са изброени  в 
точка  43, е като опция  (вж. допълнение  2). 
45. В Указанията  за хистопатология  (19) се съдържа  допълнителна  
подробна  информация  относно  дисекцията , фиксирането , разрязването  
и хистопатологията  на ендокринните  тъкани . 
46. В международната  програма  за изпитване  са получени  някои  доказат­  
елства , че едва доловими  ендокринни  ефекти  от химикали  с нисък  
потенциал  за засягане  хомеостазата  на половите  хормони  могат  да 
бъдат  определяни  от смущения  в синхронизирането  на естралния  
цикъл  в различни  тъкани , а не толкова  от явни  хистопатологични  
изменения  в женските  полови  органи . Въпреки  че не е получено  оконч­  
ателно  доказателство  за такива  въздействия , препоръчва  се доказат­  
елствата  за евентуална  асинхронност  на естралния  цикъл  да бъдат  
вземани  под внимание  при интерпретиране  на хистопатологията  на 
яйчниците  (фоликулни , тека и гранулозни  клетки ), матката , шийката  
на матката  и влагалището . Ако се прави  оценка  на етапа  от цикъла , 
както  е определен  с вагинални  намазки , той също  би могъл  да бъде  
включен  в това сравнение . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 282
 
Хистопатология  
47. На консервираните  органи  и тъкани  на всички  животни  от контролните  
групи  и групите  с висока  доза следва  да бъде  извършена  пълна  хист­  
опатология . Тези  изследвания  следва  да се приложат  и за животните  от 
всички  други  групи , получили  дозата , ако се наблюдават  изменения  в 
резултат  от третирането  на групата  с висока  доза. 
48. Трябва  да бъдат  изследвани  всички  макроскопски  увреждания . 
49. Когато  се използва  сателитна  група , хистопатология  следва  да се 
извършва  на тъкани  и органи , за които  е установено  че показват  
ефект  при третираните  групи . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
50. Следва  да бъдат  осигурени  индивидуални  данни . Допълнително  всички  
данни  следва  да се обобщят  в таблична  форма , показваща  за всяка  
изпитвана  група  броя  на животните  при започване  на изпитването , 
броя  на животните , които  са открити  мъртви  по време  на изпитването  
или са били  умъртвени  по хуманни  причини , и времето  на смъртта  или 
умъртвяването  по хуманни  причини , броя  на животните  с проявени  
признаци  на токсичност , описание  на наблюдаваните  признаци  на токс­  
ичност , включително  времето  на започването , продължителността  и 
силата  на всички  токсични  въздействия , броя  на животните  с 
увреждания , типа  на уврежданията , остротата  им и процента  на 
животните , показващи  всеки  отделен  тип увреждане . 
51. Когато  е възможно , следва  да се оценят  получените  числени  резултати  
чрез използване  на подходящ  и общоприет  статистически  метод . Чрез  
сравнения  на въздействието  в рамките  на даден  обхват  на дозиране  
следва  да се избегне  използването  на множество  t-изпитвания . Статист­  
ическите  методи  следва  да бъдат  избрани  при планирането  на 
изследването . 
52. За контрол  на качеството  се предлага  да се събират  контролни  данни  за 
минали  периоди  и да се изчисляват  коефициенти  на вариация  за 
числовите  данни , особено  за параметрите , свързани  с откриване  на 
нарушители  на функциите  на ендокринната  система . Тези  данни  
могат  да бъдат  използвани  за сравнение  когато  се извършва  оценка  
на актуалните  изследвания . 
Доклад  от изпитването  
53. Докладът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— физическа  природа , чистота  и физични  и химични  свойства , 
— данни  за идентичността . 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— обосновка  за избора  на носител , когато  е различен  от вода . 
Изпитвани  животни : 
— използван  вид/порода , 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— източник , условия  на отглеждане , хранителен  режим  и т.н., 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на изпитването , 
— обосновка  при използване  на видове , различни  от плъх . 
Условия  на изпитването : 
— обосновка  за избора  на нивото  на доза, 
— подробна  информация  за състав  на изпитвания  химикал /хранит­  
елната  смес , постигната  концентрация , стабилност  и хомогенност  
на сместа , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 283
 
— подробна  информация  относно  прилагането  на изпитвания  химикал , 
— превръщане  от концентрация  на изпитвания  химикал  в храна / 
питейна  вода  (ppm) в действителна  доза (mg на kg телесно  тегло  
дневно ), ако е приложимо , 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  за пиене . 
Проучвани  незадължителни  крайни  точки  
— списък  на проучваните  незадължителни  крайни  точки  
Резултати : 
— телесно  тегло /промени  в телесното  тегло , 
— ако е приложимо  — консумация  на храна  и вода , 
— данни  относно  отговор  на токсичност  в зависимост  от пола  и 
нивото  на доза, включително  признаци  на токсичност , 
— природа , сила  и продължителност  на клиничните  наблюдения  
(независимо  обратими  или необратими ), 
— оценки  на сензорната  активност , силата  на захвата  и двигателната  
активност , 
— хематологични  изпитвания  с относими  базови  стойности , 
— клинични  биохимични  изпитвания  с относими  базови  стойности , 
— телесно  тегло  при умъртвяване  и данни  за теглото  на отделните  
органи , 
— находки  при аутопсията , 
— подробно  описание  на всички  хистопатологични  находки , 
— данни  за абсорбция , ако са налични , 
— статистическа  обработка  на резултатите , ако е подходящо . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 284
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Андрогенност  е способността  на даден  химикал  да действа  като естествен  
андрогенен  хормон  (напр . тестостерон ) в организъм  на бозайник . 
Антиандрогенност  е способността  на даден  химикал  да подтиска  
действието  на естествен  андрогенен  хормон  (напр . тестостерон ) в 
организъм  на бозайник . 
Антиестрогенност  е способността  на даден  химикал  да подтиска  
действието  на естествен  естрогенен  хормон  (напр . 17бета-естрадиол ) в 
организъм  на бозайник . 
Антитиреоидна  активност  е способността  на даден  химикал  да подтиска  
действието  на естествен  тиреоиден  хормон  (напр . T  3 ) в организъм  на 
бозайник . 
Дозиране  е общо  понятие , включващо  дозата  и честотата  и продължит­  
елността  на нейния  прием . 
Доза  е прилаганото  количество  от изпитвания  химикал . Дозата  се изразява  
като маса  на изпитвания  химикал  за единица  телесно  тегло  на изпитваното  
животно  на ден (напр . mg на kg телесно  тегло  дневно ), или като постоянна  
концентрация  в храната . 
Очевидна  токсичност  е общо  понятие , описващо  ясни  признаци  на токс­  
ичност  след  прилагането  на изпитван  химикал . Те следва  да бъдат  дост­  
атъчни  за оценка  на опасността  и следва  да бъдат  такива , че при увел­  
ичаване  на прилаганата  доза да се очаква  развитие  на признаци  на силна  
токсичност  и вероятна  смърт . 
NOAEL  е съкращение  за нивото  без наблюдаван  неблагоприятен  ефект . 
Това  е най-високото  ниво  на доза, при което  не се наблюдават  свързани  с 
третирането  неблагоприятни  находки  в резултат  от третирането . 
Естрогенност  е способността  на даден  химикал  да действа  като естествен  
естрогенен  хормон  (напр . 17бета-естрадиол ) в организъм  на бозайник . 
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  на 
настоящия  метод  за изпитване . 
Тиреоидна  активност  е способността  на даден  химикал  да действа  като 
естествен  тиреоиден  хормон  (напр . T 3 ) в организъм  на бозайник . 
Валидиране  е научна  процедура , планирана  за характеризиране  на 
работните  изисквания  и ограничения  на даден  метод  за изпитване , и за 
доказване  на неговата  надеждност  и относимост  за определена  цел. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 285
 
Допълнение  2 
Крайни  точки , препоръчани  за откриване  на нарушители  на 
функциите  на ендокринната  система  при настоящия  метод  б.7 
Задължителни  крайни  точки  Незадължителни  крайни  точки  
Тегло  
— Тестиси  
— Епидидими  
— Надбъбречни  жлези  
— Простата  + семенни  мехурчета  с 
коагулиращите  жлези  — Яйчници  
— Матка , включително  шийката  
— Щитовидна  жлеза  
Хистопатология  
— Полови  жлези : 
— тестиси  и 
— яйчници  
— Допълнителни  полови  органи : 
— епидидими , 
— простата  + семенни  мехурчета  
с коагулиращите  жлези  
— матка , включително  шийката  
— Надбъбречна  жлеза  
— Щитовидна  жлеза  
— Влагалище  — Вагинални  намазки  
— Мъжки  млечни  жлези  
— Хипофиза  
Измерване  на хормони  
— Циркулиращи  нива  на T 3 , T 4 
— Циркулиращи  нива  на TSH  
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (Paris, 1992). Chairman’s Report of the Meeting of the  ad hoc  
Working Group of Experts on Systemic Short-term and (Delayed) Neuro ­
toxicity.  
(2) IPCS (1986). Principles and Methods for the Assessment of Neurotoxicity 
Associated with Exposure to Chemicals. Environmental Health Criteria 
Document № 60 
(3) Tupper DE, Wallace RB (1980). Utility of the Neurologic Examination in 
Rats. Acta Neurobiol. Exp. 40: 999-1003.  
(4) Gad SC (1982). A Neuromuscular Screen for Use in Industrial Toxicology. 
J. Toxicol Environ. Health 9: 691-704.  
(5) Moser VC, McDaniel KM, Phillips PM (1991). Rat Strain and Stock 
Comparisons Using a Functional Observational Battery: Baseline Values and Effects of Amitraz. Toxicol. Appl. Pharmacol. 108: 267-283.
 
(6) Meyer OA, Tilson HA, Byrd WC, Riley MT (1979). A Method for the 
Routine Assessment of Fore- and Hindlimb Grip Strength of Rats and 
Mice. Neurobehav. Toxicol. 1: 233-236.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 286
 
(7) Crofton KM, Howard JL, Moser VC, Gill MW, Reiter LW, Tilson HA, 
MacPhail RC (1991). Interlaboratory Comparison of Motor Activity Expe ­
riments: Implication for Neurotoxicological Assessments. Neurotoxicol. Teratol. 13: 599-609.
 
(8) OECD (1998). Report of the First Meeting of the OECD Endocrine 
Disrupter Testing and Assessment (EDTA) Task Force, 10th-11th March 
1998, ENV/MC/CHEM/RA(98)5.  
(9) OECD. (2006). Report of the Validation of the Updated Test Guideline 
407: Repeat Dose 28-day Oral Toxicity Study in Laboratory Rats. Series on Testing and Assessment № 59, ENV/JM/MONO(2006)26.
 
(10) OECD (2002). Detailed Review Paper on the Appraisal of Test Methods 
for Sex Hormone Disrupting Chemicals. Series on Testing and Assessment 
№ 21, ENV/JM/MONO(2002)8.  
(11) OECD (2012).Conceptual Framework for Testing and Assessment of 
Endocrine Disrupting Chemicals. http://www.oecd.org/document/58/ 0,3343,fr_2649_37407_2348794_1_1_1_37407,00.htm l
 
(12) OECD (2006). Final Summary report of the meeting of the Validation 
Management Group for mammalian testing. ENV/JM/TG/EDTA/M(2006)2.  
(13) OECD. Draft Summary record of the meeting of the Task Force on 
Endocrine Disrupters Testing and Assessment. ENV/JM/TG/ED ­
TA/M(2006)3.  
(14) OECD (2000). Guidance document on the recognition, assessment and use 
of clinical signs as humane endpoints for experimental animals used in 
safety evaluation. Series on Testing and Assessment № 19. ENV/JM/MO ­
NO(2000)7.  
(15) Haley P, Perry R, Ennulat D, Frame S, Johnson C, Lapointe J-M, Nyska A, 
Snyder PW, Walker D, Walter G (2005). STP Position Paper: Best Practice 
Guideline for the Routine Pathology Evaluation of the Immune System. Toxicol Pathol 33: 404-407.
 
(16) Hess RA, Moore BJ (1993). Histological Methods for the Evaluation of the 
Testis. In: Methods in Reproductive Toxicology, Chapin RE and Heindel JJ 
(eds). Academic Press: San Diego, CA, pp. 52-85.  
(17) Latendresse JR, Warbrittion AR, Jonassen H, Creasy DM.(2002) Fixation 
of testes and eyes using a modified Davidson’s fluid: comparison with Bouin’s fluid and conventional Davidson’s fluid. Toxicol. Pathol. 30, 
524-533.
 
(18) OECD (2007). OECD Guideline for Testing of Chemicals № 440: Uterot ­
rophic Bioassay in Rodents: A short-term screening test for oestrogenic properties.
 
(19) OECD (2009). Guidance Document 106 on Histologic evaluation of 
Endocrine and Reproductive Tests in Rodents ENV/JM/Mono(2009)11.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 287
 
Б.8. СУБАКУТНА  ИНХАЛАТОРНА  ТОКСИЧНОСТ : 28-ДНЕВНО  
ИЗСЛЕДВАНЕ  
РЕЗЮМЕ  
Настоящият  преработен  метод  за изпитване  Б.8. е разработен , за да се 
характеризира  напълно  токсичността  на изпитвани  химикали  по инхал­  
аторен  път вследствие  на повтаряща  се експозиция  за ограничен  период  
от време  (28 дни), и да се осигурят  данни  за количествени  оценки  на 
риска  при инхалация . Групи  от най-малко  5 мъжки  и 5 женски  гризачи  се 
експонират  6 часа на ден в продължение  на 28 дни а) на изпитвания  
химикал  на три или повече  равнища  на концентрация , б) на филтруван  
въздух  (отрицателна  контрола ), и/или в) на носителя  (контрол  върху  
носителя ). Животните  обикновено  се експонират  5 дни седмично , но 
експозиция  за 7 дни в седмицата  също  е позволена . Винаги  се изпитват  
мъжки  и женски  животни , но те могат  да бъдат  експонирани  при 
различни  равнища  на концентрация , ако е известно , че единият  пол е по- 
възприемчив  на даден  изпитван  химикал . Настоящият  метод  дава 
възможност  на ръководителя  на изследването  да включва  сателитни  (за 
обратимост ) групи , бронхоалвеоларен  лаваж  (БАЛ ), неврологични  
изпитвания  и допълнителна  клинична  патология  и хистопатологични  
оценки  за по-добро  характеризиране  на токсичността  на даден  изпитван  
химикал . 
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
412 на ОИСР  (2009 г.). Първоначалното  Указание  за изпитване  за 
субакутна  инхалаторна  токсичност  № 412 (TG 412) е прието  през 
1981 година  (1). Настоящият  метод  Б.8. (като равностоен  на преразг­  
леданото  TG 412) е актуализиран , така че да отразява  състоянието  на 
науката  и с оглед  посрещане  на настоящите  и бъдещи  регулаторни  
нужди . 
2. Настоящият  метод  дава възможност  за характеризиране  на неблаг­  
оприятни  ефекти  вследствие  на повтаряща  се експозиция  чрез 
инхалация  на изпитван  химикал  в продължение  на 28 дни. Данните , 
получени  при 28-дневното  изследване  за субакутна  инхалаторна  токс­  
ичност , могат  да се използват  за количествена  оценка  на риска  [ако не 
бъдат  последвани  от 90-дневно  изследване  за субхронична  инхалаторна  
токсичност  (глава  Б.29 от настоящото  приложение )]. Данните  могат  
също  да предоставят  информация  за избора  на концентрации  за по- 
продължителни  изследвания , като например  90-дневно  изследване  за 
субхронична  инхалаторна  токсичност . Настоящият  метод  за изпитване  
не е специално  предназначен  за изпитване  на наноматериали . 
Определенията , използвани  в контекста  на настоящия  метод  за 
изпитване , са дадени  в края  на тази глава  и в GD 39 (2).  
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
3. Цялата  налична  информация  за изпитвания  химикал  следва  да бъде  
разгледана  от лабораторията , извършваща  изпитвания , преди  
провеждане  на изследването  с цел повишаване  качеството  на 
изследването  и свеждане  до минимум  на използването  на животни . 
Информация , която  ще допринесе  за избор  на подходящи  конце­  
нтрации  на изпитване , може  да включва  данни  за идентификация , 
химична  структура  и физични  и химични  свойства  на изпитвания  
химикал ; резултати  от всякакви  изпитвания  за токсичност , извършени  
in vitro  или in vivo ; очаквани  употреби  и потенциал  за експозиция  на 
човека ; налични  данни  за (количествена ) зависимост  структура - 
активност  и токсикологични  данни  за вещества  със сходна  структура ; 
и данни , получени  от изпитвания  за остра  инхалаторна  токсичност . Ако 
в хода  на изследването  се очаква  или се наблюдава  невротоксичност , 
ръководителят  на изследването  може  да предпочете  да включи  
подходящи  оценки  като например  батерия  от функционални  
изпитвания  (FOB) и измерване  на двигателната  активност . Въпреки  
че по отношение  на специфични  изследвания  моментът  на експоз­  
ициите  може  да бъде  от решаващо  значение , изпълнението  на тези 
допълнителни  дейности  не следва  да пречи  на основния  план  на 
изследването . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 288
 
4. Разредени  разтвори  на корозивни  или дразнещи  изпитвани  химикали  
могат  да се изпитват  при концентрации , които  ще доведат  до желаната  
степен  на токсичност  [вж. GD 39 (2)]. При експозиция  на животните  на 
тези материали  целевите  концентрации  трябва  да са достатъчно  ниски , 
за да не причиняват  видима  болка  и дистрес , но също  така да са дост­  
атъчни  за да се разшири  обхватът  на кривата  концентрация -отговор  до 
равнища , при които  се постигат  регулаторната  и научната  цели  на 
изпитването . Тези  концентрации  следва  да бъдат  подбирани  въз 
основа  на конкретен  случай , за предпочитане  въз основа  на 
планирано  по подходящ  начин  изследване  за определяне  на обхвата , 
предоставящо  информация  за критичната  крайна  точка , за всякакъв  
праг  на дразнене  и за времето  на поява  (вж. точки  11—13). Следва  
да се предостави  обосновка  за избора  на концентрацията . 
5. Умиращите  животни , както  и животните , които  очевидно  изпитват  
болка  или показват  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , 
следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  начин . Умиращите  животни  
се разглеждат  по същия  начин , както  животните , умрели  по време  на 
изпитването . Критериите  за вземане  на решение  за умъртвяване  на 
умиращи  или силно  страдащи  животни  и указанията  за разпознаване  
на предвидима  или неизбежна  смърт  са предмет  на Ръководство  на 
ОИСР  за хуманен  край  (3). 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
6. Използват  се здрави  млади  полово  зрели  гризачи  от обичайно  
използваните  за лабораторни  изследвания  породи . Предпочитаният  
вид е плъхът . Използването  на други  животински  видове  следва  да 
бъде  обосновано . 
Подготовка  на животните  
7. Женските  индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . В 
деня  на подбора  на случаен  принцип  животните  следва  да бъдат  млади  
полово  зрели  индивиди  на възраст  от 7 до 9 седмици . Телесните  тегла  
следва  да бъдат  в рамките  на ± 20 % от средното  тегло  за всеки  пол. 
Животните  се избират  произволно , маркират  се, за да е възможно  
индивидуалното  им идентифициране , и се държат  в техните  клетки  
поне  5 дни преди  започване  на изпитването , за да се даде  възможност  
за аклиматизиране  към лабораторните  условия . 
Отглеждане  на животни  
8. Всяко  животно  се идентифицира  индивидуално , по възможност  с 
подкожни  транспондери , за да се улеснят  наблюденията  и да се 
избегне  объркване . Температурата  на помещението , в което  се 
отглеждат  опитните  животни , следва  да бъде  22 ± 3 °C. В идеалния  
случай  относителната  влажност  следва  да бъде  поддържана  в интервала  
от 30—70 %, макар  че поддържането  в този интервал  може  да не е 
възможно , когато  се използва  вода  като носител . Преди  и след  експоз­  
ициите  животните  обичайно  следва  да се поставят  в клетките  в групи  
по пол и концентрация , но броят  на животните  в дадена  клетка  не 
следва  да възпрепятства  точните  наблюдения  над всяко  животно  и 
следва  да свежда  до минимум  загубите  поради  канибализъм  и борба . 
За животни , при които  експозицията  е само  през носа , може  да е 
необходимо  същите  да бъдат  аклиматизирани  към ограничителните  
тръби . Ограничителните  тръби  не следва  да причиняват  ненужен  
стрес  у животните  поради  физични , термични  или причини , свързани  
с обездвижване . Ограничаването  може  да засегне  физиологични  крайни  
точки  като телесната  температура  (хипертермия ) и/или минутния  
дихателен  обем . Ако са налични  типови  данни , които  показват , че не 
настъпват  такива  осезаеми  промени , тогава  не е необходимо  
предварително  адаптиране  към ограничителните  тръби . Животни , при 
които  експозицията  на аерозол  е на цялото  тяло , следва  да се 
настаняват  отделно  по време  на експозицията , за да се предотврати  
възможността  животното  да филтрува  изпитвателния  аерозол  през 
козината  на намиращи  се в същата  клетка  други  животни . Освен  по 
време  на експозицията , могат  да се използват  конвенционални  и 
сертифицирани  лабораторни  храни , придружени  с неограничено  
количество  битова  питейна  вода . Осветлението  трябва  да бъде  
изкуствено , като последователността  е 12 часа светлина /12 часа 
тъмнина . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 289
 
Инхалационни  камери  
9. При избора  на инхалационна  камера  следва  да бъдат  разгледани  
естеството  на изпитвания  химикал  и целта  на изпитването . Предпоч­  
итаният  начин  на експозиция  е само  през носа  (в този термин  се 
включват  експозиции  само  на главата , само  през носа  или само  през 
муцуната ). Експозицията  само  през носа  обичайно  се предпочита  при 
изследване  на течни  и твърди  аерозоли , както  и на пари , които  могат  да 
кондензират  с образуване  на аерозоли . Специалните  цели  на 
изследването  могат  да се постигнат  по-добре  чрез използване  на 
режим  на експозиция  на цялото  тяло , но това следва  да бъде  обос­  
новано  в доклада  от изследването . За да се гарантира  стабилност  на 
атмосферата  при използване  на камера  за експозиция  на цялото  тяло , 
общият  „обем “ на изпитваните  животни  не трябва  да превишава  5 % от 
обема  на камерата . Принципите  на техниките  за експозиция  само  през 
носа  и за експозиция  на цялото  тяло  и техните  специфични  предимства  
и недостатъци  са описани  в GD 39 (2).  
ИЗСЛЕДВАНИЯ  НА ТОКСИЧНОСТТА  
Пределни  концентрации  
10. За разлика  от изследванията  за остра  токсичност , при 28-дневното  
изследване  за субакутна  инхалаторна  токсичност  няма  определени  
пределни  концентрации . За максималната  изпитвана  концентрация  
следва  да се вземе  предвид : 1) максимално  достижимата  концентрация , 
2) нивото  на експозиция  на човека  при „най-лошия  случай “ 3) необход­  
имостта  от поддържане  на подходящо  подаване  на кислород , и/или 4) 
съображения , свързани  с хуманното  отношение  към животните . При 
отсъствието  на ограничения , основаващи  се на данни , могат  да бъдат  
използвани  границите  за остра  токсичност  по Регламент  (ЕО) 
№ 1272/2008 (13) ( т.е. до максимална  концентрация  от 5 mg/l за 
аерозоли , 20 mg/l за пари  и 20 000 ppm за газове ); вж. GD 39 (2). Трябва  
да се представи  обосновка , ако е необходимо  превишаване  на тези граници  
при изпитване  на газове  или силно  летливи  изпитвани  химикали  (напр ., 
хладилни  агенти ). Пределната  концентрация  трябва  да води  до токсичност  
по категоричен  начин , без да причинява  неоправдан  стрес  за животните  и 
без да влияе  на продължителността  на живота  им (3). 
Изследване  за определяне  на обхвата  
11. Преди  началото  на основното  изследване  може  да бъде  необходимо  да 
се извърши  изследване  за определяне  на обхвата . Изследването  за 
определяне  на обхвата  е по-обширно  от зрителното  изследване , тъй 
като не е ограничено  до избора  на концентрация . Познанията , 
получени  при изследването  за определяне  на обхвата , могат  да 
доведат  до успешно  основно  изследване . Изследването  за определяне  
на обхвата  може  например  да предостави  техническа  информация  за 
дадено  основно  изследване  по отношение  на методите  за анализ , 
определянето  на размера  на частиците , откриването  на механизми  на 
токсичност , данните  от клиничната  патология  и хистопатологията  и 
оценките  на вероятните  равнища  на NOAEL и на максималната  
допустима  концентрация . Ръководителят  на изследването  може  да 
избере  да използва  изследването  за определяне  на обхвата  за уста­  
новяване  на прага  на дразнене  на дихателните  пътища  (напр . с хист­  
опатологично  изследване  на дихателните  пътища , изпитване  на 
белодробната  функция  или бронхоалвеоларен  лаваж ), на горната  
гранична  стойност  на концентрацията , която  се понася  без излишен  
стрес  за животните , и на параметрите , които  най-добре  характеризират  
токсичността  на даден  изпитван  химикал . 
12. Изследването  за определяне  на обхвата  може  да включва  едно  или повече  
равнища  на концентрация . Не повече  от три животни  от мъжки  и три от 
женски  пол трябва  да бъдат  експонирани  на всяко  равнище  на конце­  
нтрация . Изследването  за определяне  на обхвата  трябва  да продължи  
най-малко  5 дни и по принцип  не повече  от 14 дни. Обосновката  за 
избора  на концентрации  за основното  изследване  следва  да бъде  предо­  
ставена  в доклада  от изследването . Целта  на основното  изследване  е да 
покаже  взаимовръзката  концентрация -отговор  въз основа  на това, което  
се очаква  да е най-чувствителната  крайна  точка . Ниската  концентрация  в 
идеалния  случай  е концентрация  без наблюдаван  неблагоприятен  ефект , 
докато  високата  концентрация  трябва  да разкрива  токсичност  по 
категоричен  начин , без да води  до неоправдан  стрес  за животните  и без 
да влияе  на продължителността  на живота  им (3). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 290
 
13. При избор  на равнища  на концентрация  за изследването  за определяне  
на обхвата  цялата  достъпна  информация  трябва  да бъде  разгледана , 
включително  зависимостите  структура -активност  и данните  за 
подобни  химикали  (вж. точки  3). Дадено  изследване  за определяне  на 
обхвата  може  да потвърди /отхвърли  считаните  за най-чувствителни  
механистично  определени  крайни  точки , напр . подтискане  на холин­  
естеразата  от органофосфати , образуване  на метхемоглобин  от еритроц­  
итотоксични  агенти , тиреоидни  хормони  (T  3 , T 4 ) за тиреотоксиканти , 
белтъци , лактатдехидрогеназа  или неутрофили  в бронхоалвеоларен  
лаваж  за безвредни  малко  разтворими  частици  или аерозоли  с 
дразнещо  действие  върху  белите  дробове . 
Основно  изследване  
14. Основното  изследване  за субакутна  токсичност  обичайно  включва  три 
равнища  на концентрация , а също  и паралелни  отрицателни  (въздух ) 
контроли  и/или контроли  на носителя , ако е необходимо  (вж. точки  17). 
Всички  налични  данни  следва  да бъдат  използвани  за подпомагане  на 
избора  на подходящи  нива  на експозиция , включително  резултатите  от 
изследванията  за систематична  токсичност , на метаболизма  и на 
кинетиката  (следва  да се обърне  специално  внимание  на избягване  на 
високите  равнища  на концентрация , които  насищат  кинетичните  
процеси ). Всяка  изпитвана  група  се състои  от най-малко  10 гризачи  
(5 мъжки  и 5 женски ), които  се експонират  на изпитвания  химикал  в 
продължение  на 6 часа всеки  ден 5 дни в седмицата  за срок  от 4 
седмици  (обща  продължителност  на изследването  28 дни). Животните  
могат  да бъдат  експонирани  7 дни в седмицата  (напр . при изпитване  на 
инхалирани  фармацевтични  продукти ). Ако е известно , че единият  от 
половете  е по-възприемчив  към даден  изпитван  химикал , двата  пола  
могат  да бъдат  експонирани  на различни  равнища  на концентрация , 
за да се оптимизира  отношението  концентрация -отговор , както  е 
описано  в точки  15. Ако експозиция  на вид гризач , различен  от 
плъх , е само  през носа , максималната  продължителност  на експоз­  
ицията  може  да бъде  адаптирана  така, че да се минимизира  специф­  
ичният  за този вид дистрес . Трябва  да бъде  предоставена  обосновка  
при използване  на продължителност  на експозицията  по-малка  от 6 
часа дневно , или когато  е необходимо  да се проведе  изследване  с 
експозиция  на цялото  тяло  с голяма  продължителност  (например  22 
часа/ден) [вж. GD 39 (2)]. Храна  не следва  да се предоставя  по време  
на периода  на експозиция , освен  ако експозицията  надвишава  6 часа. 
Вода  може  да се дава по време  на експозиция  на цялото  тяло . 
15. При подбраните  целеви  концентрации  следва  да бъде  идентифициран  
прицелният  орган (и) и да се демонстрира  ясно  отношение  конце­  
нтрация -отговор : 
— Високото  равнище  на концентрация  трябва  да води  до токсични  
ефекти , но без да предизвиква  трайни  признаци  или смъртност , 
които  биха  възпрепятствали  съдържателната  оценка . 
— Междинното (ите) равнище (а) на концентрация  трябва  да са 
разпределени  така, че да се получи  градация  на токсичните  
ефекти  между  тези при ниска  и тези при висока  концентрация . 
— Ниското  равнище  на концентрация  трябва  да предизвиква  малки  
или никакви  признаци  на токсичност . 
Изследване  със сателитна  група  (за обратимост ) 
16. Изследването  със сателитна  група  (за обратимост ) може  да бъде  
използвано  за наблюдение  на случаи  на обратимост , персистиране  
или забавяне  на проявата  на токсичността  за достатъчно  дълъг  
период  след  третирането , но не по-малък  от 14 дни. Сателитните  
групи  (за обратимост ) се състоят  от пет мъжки  и пет женски  
животни , експонирани  едновременно  с опитните  животни  в 
основното  изследване . Изследваните  сателитни  групи  (за обратимост ) 
следва  да бъдат  експонирани  на изпитвания  химикал  при най-високото  
равнище  на концентрация  от изследвания  химикал  и следва  да има 
паралелни  контроли  на въздуха  и/или на носителя , ако е необходимо  
(вж. точки  17). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 291
 
Контролни  животни  
17. Животните  за паралелните  негативни  контроли  (въздух ) следва  да се 
третират  по същия  начин , както  и изпитваната  група  животни , с 
изключение  на това, че те са изложени  на филтруван  въздух , а не на 
изпитвания  химикал . Когато  за подпомагане  генерирането  на 
атмосферата  за изпитване  се използва  вода  или друго  вещество , в 
изследването  трябва  да се включи  контролна  група  за носителя  
вместо  група  за паралелни  негативни  контроли  (въздух ). Когато  това 
е възможно , като носител  трябва  да се използва  вода . Когато  водата  се 
използва  като носител , контролните  животни  трябва  да бъдат  
експонирани  на въздух  със същата  относителна  влажност  като 
експонираните  групи . Изборът  на подходящ  носител  следва  да се 
базира  върху  подходящо  проведено  предварително  проучване  или 
върху  данни  за минали  периоди . Ако носителят  не е с добре  позната  
токсичност , ръководителят  на изследването  може  да реши  да използва  
както  негативни  контроли  (въздух ), така и контроли  за носителя , но 
това силно  се обезкуражава . Ако данните  за минали  периоди  показват , 
че даден  носител  не е токсичен , тогава  няма  необходимост  от 
негативна  контролна  група  (въздух ), а следва  да се използва  само  
контрола  за носителя . Ако при дадено  предварително  проучване  на 
смесен  с носител  изпитван  химикал  не бъде  установена  токсичност , 
от това следва , че носителят  не е токсичен  при концентрацията  на 
изпитване  и следва  да бъде  използвана  тази контрола  за носителя . 
УСЛОВИЯ  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Прилагане  на концентрациите  
18. Животните  се експонират  на изпитвания  химикал , който  представлява  газ, 
пари , аерозол  или смес  от тях. Агрегатното  състояние , което  трябва  да бъде  
изпитано , зависи  от физичните  и химичните  свойства  на изпитвания  
химикал , избраната  концентрация , и/или най-вероятната  физична  форма  
по време  на манипулирането  и употребата  на изпитвания  химикал . 
Хигроскопични  и химически  реактивоспособни  изпитвани  химикали  
следва  да бъдат  изпитвани  в среда  от сух въздух . Следва  да се полагат  
грижи  за избягване  достигането  на концентрации , при които  може  да 
бъде  причинена  експлозия . Частици  от материал  могат  да бъдат  
подложени  на механични  процеси  за намаляване  на размера  на частиците . 
Повече  подробна  информация  е предоставена  в GD 39 (2).  
Разпределение  според  размера  на частиците  
19. Следва  да бъде  извършено  определяне  на размера  на частиците  за 
всички  аерозоли  и за парите , които  могат  да кондензират  с образуване  
на аерозоли . За да могат  да бъдат  експонирани  всички  относими  части  
на дихателните  пътища  се препоръчват  аерозоли  с диаметър , равен  на 
аеродинамичния  диаметър  при медианата  на масата  на 
частиците  (MMAD), намиращ  се в диапазон  от 1 до 3 μm и с геом­  
етрично  стандартно  отклонение  (σ g ) в диапазон  от 1,5 до 3,0 (4). 
Въпреки  че следва  да се положи  разумно  усилие  за спазване  на този 
стандарт , ако това не може  да бъде  постигнато  следва  да бъде  предо­  
ставена  експертна  оценка . Например  размерите  на частиците  от 
метални  пари  могат  да бъдат  по-малки  от този стандарт , а тези на 
заредени  частици  и влакна  могат  да надхвърлят  този стандарт  
Подготовка  на изпитвания  химикал  в носител  
20. В идеалния  случай  изпитваният  химикал  трябва  да бъде  изпитван  без 
носител . Ако е необходимо  да се използва  носител  за генериране  на 
подходяща  концентрация  и размер  на частиците  на изпитвания  химикал , 
за предпочитане  следва  да се използва  вода . Когато  изпитваният  химикал  
се разтваря  в носител , следва  неговата  стабилност  да бъде  доказана . 
МОНИТОРИНГ  НА УСЛОВИЯТА  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Въздушен  поток  в камерата  
21. Въздушният  поток  през камерата  за експозиция  трябва  да бъде  вним­  
ателно  контролиран , непрекъснато  наблюдаван  и записван  най-малко  на 
всеки  час по време  на всяка  експозиция . Мониторингът  в реално  време  
на концентрацията  на атмосферата  за изпитване  (или на стабилността  
във времето ) представлява  цялостно  измерване  на всички  динамични  
параметри  и предоставя  непряко  средство  за контрол  на всички  
относими  динамични  параметри , свързани  с инхалацията . Ако се ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 292
 
извършва  мониторинг  на концентрацията  в реално  време , честотата  на 
измерването  на въздушния  поток  може  да бъде  намалена  до едно  
единствено  измерване  на експозиция  дневно . Специално  внимание  
следва  да се обърне  на избягване , при камери  за експозиция  само  през 
носа , на повторно  инхалиране . Концентрацията  на кислород  следва  да 
бъде  не по-малко  от 19 %, а концентрацията  на въглероден  диоксид  не 
трябва  да превишава  1 %. Ако има основание  да се смята , че тези 
стандарти  не могат  да бъдат  спазени , концентрациите  на кислорода  и 
на въглеродния  диоксид  следва  да се измерват . Ако измерванията  в 
първия  ден от експозицията  показват , че тези газове  са на подходящи  
равнища , допълнителни  измервания  не следва  да са необходими . 
Температура  и относителна  влажност  на камерата  
22. Температурата  в камерата  трябва  да се поддържа  на 22 ± 3 °C. Относ­  
ителната  влажност  в зоната  на дишане  на животните  — както  за 
експозиция  само  през носа , така и за експозиция  на цялото  тяло  — 
трябва  да бъде  наблюдавана  непрекъснато  и записвана  на всеки  час по 
време  на всяка  експозиция , когато  е възможно . Предпочита  се относит­  
елната  влажност  да бъде  поддържана  в диапазона  между  30 и 70 %, но 
това може  или да се окаже  непостижимо  (например  при изпитване  на 
смеси  на основата  на вода ), или да не може  да бъде  измерено  поради  
въздействие  на изпитвания  химикал  върху  метода  за изпитване . 
Изпитван  химикал : Номинална  концентрация  
23. Когато  е осъществимо , номиналната  концентрация  в камерата  за 
експозиция  следва  да се изчислява  и записва . Номиналната  конце­  
нтрация  е масата  на генерирания  изпитван  химикал , разделена  на 
общия  обем  въздух , преминал  през системата  на инхалационната  
камера . Номиналната  концентрация  не се използва  за характеризиране  
на експозицията  на животните , а сравнение  на номиналната  конце­  
нтрация  и действителната  концентрация  дава показание  за ефикас­  
ността  на генериране  на системата  за изпитване  и следователно  може  
да се използва  за откриване  на проблеми  при генерирането . 
Изпитван  химикал : Действителна  концентрация  
24. Действителната  концентрация  е концентрацията  на изпитвания  химикал  
в зоната  на дишане  на животните  в дадена  инхалационна  камера . 
Действителни  концентрации  могат  да бъдат  получени  чрез специфични  
методи  (например  чрез пряко  пробовземане , свързани  с адсорбция  или 
с химична  реакция  методи  и последващо  аналитично  охарактеризиране ) 
или чрез неспецифични  методи  като гравиметричен  анализ  с 
филтруване . Използването  на гравиметричен  анализ  е приемливо  само  
за еднокомпонентни  прахови  аерозоли  или за аерозоли  от ниско  
летливи  течности  и следва  да бъде  подпомогнато  от подходящо  спец­  
ифично  за изпитвания  химикал  охарактеризиране  чрез предварително  
изследване . Концентрацията  на многокомпонентни  прахови  аерозоли  
също  може  да бъде  определяна  чрез гравиметричен  анализ . Това  
обаче  изисква  аналитични  данни , които  доказват , че съставът  на 
намиращия  се във въздуха  материал  е подобен  на този на изходния  
материал . Ако тази информация  не е налична , може  да е необходимо  
извършване  на анализ  на изпитвания  химикал  (в идеалния  случай  в 
състоянието , в което  е разтворен  във въздуха ), повтарящо  се на 
редовни  интервали  по време  на изследването . За агенти  в аерозолна  
форма , които  могат  да се изпаряват  или да сублимират , следва  да се 
покаже , че всички  фази  са събрани  по избрания  метод . 
25. По възможност  за времетраенето  на изследването  следва  да се използва  
една  партида  от изпитвания  химикал , като изпитваната  проба  следва  да 
се съхранява  при условия , при които  се поддържат  нейната  чистота , 
хомогенност  и устойчивост . Преди  началото  на изследването  следва  да 
се направи  охарактеризиране  на изпитвания  химикал , включително  
неговата  чистота  и, ако е технически  осъществимо , идентичността , 
както  и количествата  на определените  замърсители  и примеси . Това  
може  да бъде  доказано  от, но не се ограничава  до, следните  данни : 
време  на задържане  и относителна  площ  на пика , получена  чрез массп­  
ектрометрия  или газова  хроматография  молекулна  маса , или други  
оценки . Въпреки  че лабораторията , извършваща  изпитвания , не носи  
отговорност  за идентифицирането  на пробата  за изпитване , може  да е 
разумно  лабораторията , извършваща  изпитвания , да потвърди  
охарактеризирането  на финансиращия , дори  и в ограничена  степен  
(например  цвят , физична  природа  и др.). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 293
 
26. Атмосферата  на експозицията  трябва  да бъде  поддържана  постоянна , 
доколкото  е практически  възможно . Могат  да се използват  устройства  за 
мониторинг  в реално  време , като аерозолен  фотометър  (за аерозоли ) или 
анализатор  на общо  съдържание  на въглеводороди  (за пари ), за да се 
докаже  стабилността  на условията  на експозиция . Действителната  конце­  
нтрация  в камерата  трябва  да се измерва  най-малко  3 пъти  през всеки  ден, в 
който  се извършва  експозиция , за всяко  равнище  на експозицията . Ако 
това не е осъществимо  поради  ограничена  скорост  на въздушния  поток  
или поради  ниска  концентрация , допустимо  е по едно  пробовземане  през 
всеки  период  на експозиция . В идеалния  случай  след това тази проба  
следва  да бъде  вземана  през целия  период  на експозиция . Индивидуалните  
проби  от концентрацията  в камерата  не трябва  да се отклоняват  от средната  
концентрация  в камерата  с повече  от ± 10 % за газовете  и парите  или 
± 20 % за течните  или твърдите  аерозоли . Времето  за уравновесяване  на 
камерата  (t 95 ) следва  да се изчислява  и докладва . Продължителността  на 
експозицията  обхваща  времето  за генериране  на изпитвания  химикал . Тук 
се взема  под внимание  времето  за уравновесяване  на камерата  (t 95 ) и за 
разпад . Указания  за оценката  на t 95 могат  да бъдат  намерени  в GD 39 (2).  
27. При много  сложни  смеси , съставени  от газове /пари  и аерозоли  
(например  атмосфера  след  горене  и изпитвани  химикали , отделяни  от 
целеви  продукти /оборудване  за крайна  употреба ), всяка  фаза  може  да 
реагира  по различен  начин  в инхалационната  камера . Следователно  от 
всяка  фаза  (газ/пари  и аерозол ) следва  да бъде  избрано  най-малко  едно  
вещество  (аналит ), служещо  като показател , като обичайно  това е 
основното  активно  вещество  в сместа . Когато  изпитваният  химикал  е 
смес , аналитичната  концентрация  следва  да се докладва  за цялата  смес , 
а не само  за активната  съставка  или за веществото , служещо  като 
показател  (аналита ). Допълнителна  информация  относно  действит­  
елните  концентрации  може  да бъде  намерена  в GD 39 (2).  
Изпитван  химикал : Разпределение  според  размера  на частиците  
28. Разпределението  според  размера  на частиците  на аерозоли  трябва  да се 
определя  най-малко  веднъж  седмично  за всяко  равнище  на конце­  
нтрация , като се използва  каскаден  импактор  или алтернативен  
инструмент , като например  спектрометър  за определяне  на размера  
на аеродинамични  частици . Ако може  да бъде  доказана  равностой­  
ността  на резултатите , получени  от каскадния  импактор  и от 
алтернативния  инструмент , тогава  алтернативният  инструмент  може  
да бъде  използван  по време  на цялото  изследване . 
29. Успоредно  с основния  инструмент  следва  да бъде  използвано  второ  
устройство , като например  гравиметричен  филтър  или поглътител  с 
въвеждаща  тръбичка  (импинджер )/барботиращ  апарат , за да се 
потвърди  ефикасността  на пробовземането  на основния  инструмент . 
Масовата  концентрация , получена  чрез анализ  на размера  на частиците , 
следва  да бъде  в рамките  на разумни  граници  от масовата  конце­  
нтрация , получена  чрез филтруване  [вж. GD 39 (2)]. В случай  че 
тяхната  равностойност  може  да бъде  доказана  при всички  изпитвани  
концентрации  в ранния  етап на изследването , могат  да не се извършват  
допълнителни  измервания  за потвърждение . От съображения  за 
хуманно  отношение  към животните  следва  да се вземат  мерки  за 
свеждане  до минимум  на недостатъчните  за формулиране  на 
заключение  данни , които  могат  да доведат  до необходимост  от 
повтаряне  на дадено  изследване . 
30. Определяне  на размера  на частиците  трябва  да бъде  направено  за пари , 
ако съществува  вероятност  кондензация  на парите  да доведе  до 
образуване  на аерозол , или ако бъдат  открити  частици  в атмосфера  
от пари  с потенциал  за смесени  фази . 
НАБЛЮДЕНИЯ  
31. Върху  животните  трябва  да бъдат  извършвани  клинични  наблюдения  
преди , по време  на периода  на експозиция  и след  него . Може  да има 
показания  за по-чести  наблюдения  в зависимост  от отговора  на 
животните  по време  на експозицията . Когато  наблюдението  на 
животните  е възпрепятствано  от използването  на ограничителни  
тръби  за животните , недостатъчно  осветени  камери  за експозиция  на 
цялото  тяло , или непрозрачна  атмосфера , животните  следва  да се набл­  
юдават  внимателно  след  експозицията . При наблюденията  преди  
експозицията  на следващия  ден, може  да се извърши  оценка  на 
всякаква  обратимост  или задълбочаване  на токсичните  ефекти . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 294
 
32. Всички  наблюдения  се записват  в поддържани  за всяко  животно  
индивидуални  записи . Когато  животните  са умъртвени  по хуманни  
причини  или са намерени  мъртви , времето  на смъртта  им следва  да 
бъде  записано  колкото  е възможно  по-точно . 
33. Наблюденията  в клетките  следва  да включват  изменения  в кожата  и 
козината , очите  и лигавиците ; изменения  в дихателната  и кръвоносната  
системи , изменения  в нервната  система , както  и в соматомоторната  
активност  и моделите  на поведение . Вниманието  следва  да бъде  
насочено  към наблюдения  на треперене , конвулсии , слюноотделяне , 
диария , летаргия , сън и кома . Измерването  на ректалната  температура  
може  да предостави  подкрепящи  доказателства  за рефлекторно  
забавено  дишане  или хипотермия /хипертермия , свързани  с третирането  
или затвореното  пространство . В протокола  от изследването  могат  да 
бъдат  включени  допълнителни  оценки , като кинетика , биомониторинг , 
функция  на белите  дробове , задържане  на малко  разтворими  
материали , които  се натрупват  в белодробната  тъкан , и промени  в 
поведението . 
ТЕЛЕСНО  ТЕГЛО  
34. Индивидуалното  телесно  тегло  на животните  следва  да се записва  
непосредствено  преди  първата  експозиция  (ден 0), по два пъти  на 
седмица  след  това (например : в понеделник  и в петък , за доказване  
на възстановяване  през уикенд , в който  не е извършвана  експозиция , 
или в даден  времеви  интервал , за да се даде  възможност  за оценяване  
на системната  токсичност ), и към момента  на настъпване  на смъртта  
или умъртвяването . Ако няма  ефекти  през първите  2 седмици , 
телесното  тегло  може  да се измерва  всяка  седмица  за останалото  
време  от изследването . Измерването  на теглото  на животните  от 
сателитните  групи  (за обратимост ) (в случай  на използване  на такива ) 
следва  да продължава  да се извършва  веднъж  седмично  през целия  
период  на възстановяване . При прекратяването  на изследването  
всички  животни  следва  да бъдат  претеглени  непосредствено  преди  
умъртвяването , за да се даде  възможност  за изчисляване  без изместване  
на съотношенията  между  теглото  на органите  и на цялото  тяло . 
КОНСУМАЦИЯ  НА ХРАНА  И ВОДА  
35. Консумацията  на храна  трябва  да се измерва  всяка  седмица . Консум­  
ацията  на вода  също  може  да се измерва . 
КЛИНИЧНА  ПАТОЛОГИЯ  
36. Оценките  за клиничната  патология  следва  да бъдат  правени  за всички  
животни , включително  тези в контролни  и сателитни  групи  (за обрат­  
имост ), когато  те се умъртвяват . Интервалът  от време  между  края  на 
експозицията  и вземането  на кръв  трябва  да се записва , особено  когато  
възстановяването  на изследваната  крайна  точка  е бързо . Има показания  
за вземане  на проби  след  края  на експозицията  за параметрите  с кратък  
плазмен  полуживот  (напр . COHb, CHE и MetHb).  
37. В таблица  1 са изброени  параметрите  на клиничната  патология , които  
обичайно  се изискват  за всички  токсикологични  изследвания . 
Изследване  на урина  рутинно  не е необходимо , но може  да се 
извършва , ако се счита  че е необходимо  поради  очаквана  или набл­  
юдавана  токсичност . Ръководителят  на изследването  може  да избере  да 
оцени  допълнителни  параметри , за да охарактеризира  по-добре  токсич­  
ността  на даден  изпитван  химикал  (напр . холинестераза , липиди , 
хормони , киселинно -алкално  равновесие , метхемоглобин  или телца  на 
Heinz, креатинкиназа , миелоидно -еритроидно  съотношение , тропонин , 
газове  в артериалната  кръв , лактатдехидрогеназа , сорбит­  
олдехидрогеназа , глутаматдехидрогеназа , и гама -глутамилтрансп­  
ептидаза ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 295
 
Таблица  1 
Стандартни  параметри  на клиничната  патология  
Хематология  
Брой  на еритроцитите  
Хематокрит  
Концентрация  на хемоглобина  
Средно  съдържание  на хемоглобин  
Среден  обем  на еритроцитите  
Средна  концентрация  на 
хемоглобин  в еритроцитите  
Ретикулоцити  Общ  брой  на левкоцитите  
Диференциален  брой  на 
левкоцити  
Брой  на тробмоцитите  
Потенциал  за съсирване  
(изберете  едно  от посочените ): 
— Протромбиново  време  
— Време  за съсирване  
— Частично  тромбопл­  
астиново  време  
Клинична  химия  
Глюкоза  (*) 
Общ  холестерол  
Триглицериди  
Азот  в кръвна  уреа  
Общ  билирубин  
Креатинин  
Общо  белтъци  
Албумин  
Глобулин  Аланинаминотрансфераза  
Аспартатаминотрансфераза  
Алкална  фосфатаза  
Калий  
Натрий  
Калций  
Фосфор  
Хлорид  
Изследвания  на урина  (незадължителни ) 
Външен  вид (цвят  и мътност ) 
Обем  
Относителна  плътност  или осмол­  
алност  
pH Общо  белтъци  
Глюкоза  
Кръв /кръвни  клетки  
(*) Тъй като продължителен  период  на гладуване  може  да доведе  до изместване  
при измерването  на глюкозата  за третираните  животни  в сравнение  с 
контролните , ръководителят  на изследването  следва  да определи  дали  е 
целесъобразно  гладуването  на животните . Ако се прилага  период  на 
гладуване , същият  следва  да бъде  съобразен  с използвания  животински  
вид; за плъхове  той може  да бъде  16 h (гладуване  през нощта ). Определянето  
на глюкоза  на гладно  може  да се извърши  след  гладуването  през нощта  през 
последната  седмица  на експозиция  или след  гладуването  през  нощта  преди  
аутопсията  (в последния  случай  — заедно  с всички  други  параметри  на 
клиничната  патология ). 
38. Когато  има доказателства , че долните  дихателни  пътища  (т.е. 
алвеолите ) са основното  място  на отлагане  и задържане , тогава  брон­  
хоалвеоларният  лаваж  (BAL) може  да бъде  избраната  техника  за колич­  
ествен  анализ  на хипотетичните  параметри  доза-ефект , с насочване  към 
алвеолит , възпаление  на белите  дробове  и фосфолипидоза . Това  
позволява  измененията  на зависимостта  доза-отговор  и измененията  
на изменението  във времето  на уврежданията  на алвеолите  да бъдат  
проучени  по подходящ  начин . Течността  от BAL може  да бъде  
анализирана  за общ и диференциален  брой  левкоцити , общо  белтъци  
и лактатдехидрогеназа . Други  параметри , които  могат  да бъдат  
съобразени , са тези, които  са показателни  за лизозомни  увреждания , 
фосфолипидоза , фиброза  и възпаление , причинено  от дразнене  или от 
алергия , което  може  да включва  определяне  на провъзпалителни  
цитокини /хемокини . Измерванията  на BAL по принцип  допълват  
резултатите  от хистопатологичните  изследвания , но не могат  да ги 
заместят . Насоки  за това как да се извършва  лаваж  на белия  дроб  
могат  да бъдат  намерени  в GD 39 (2).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 296
 
МАКРОСКОПСКА  ПАТОЛОГИЯ  И ТЕГЛО  НА ОРГАНИ  
39. Всички  изпитвани  животни , включително  умрелите  по време  на 
изпитването  или отстранени  от изследването  по причини , свързани  с 
хуманното  отношение  към животните , следва  да бъдат  подложени  на 
пълно  обезкръвяване  (ако е осъществимо ) и на макроскопска  аутопсия . 
Времето  между  края  на експозицията  на всяко  животно  и 
умъртвяването  му следва  да се записва . Ако аутопсията  не може  да 
се извърши  веднага  след  откриването  на мъртвото  животно , трупът  на 
животното  трябва  да бъде  охладен  (но не замразен ) при температури , 
достатъчно  ниски  за да бъде  сведена  до минимум  автолизата . 
Аутопсията  следва  да се извърши  във възможно  най-кратък  срок , 
обичайно  в рамките  на един  или два дни. Следва  да бъдат  записани  
всички  макроскопски  патологични  изменения  за всяко  животно , като се 
обърне  особено  внимание  на всякакви  изменения  в дихателните  
пътища . 
40. В таблица  2 се изброяват  органите  и тъканите , които  трябва  да бъдат  
консервивани  в подходяща  среда  по време  на макроскопската  аутопсия  
за хистопатологично  изследване . Консервирането  на поставените  в 
средни  скоби  в таблицата  органи  и тъкани  и на всякакви  други  
органи  и тъкани  е по преценка  на ръководителя  на изследването . 
Органите  с удебелен  шрифт  следва  да бъдат  почистени  и претеглени  
като мокро  тегло  колкото  е възможно  по-бързо  след  дисекцията , за да 
се избегне  изсъхването  им. Щитовидната  жлеза  и епидидимите  следва  
да бъдат  претегляни  само  при необходимост , тъй като артефакти  от 
почистването  могат  да възпрепятстват  хистопатологичната  оценка . 
Тъканите  и органите  следва  да бъдат  фиксирани  в 10 % буфериран  
формалинов  разтвор  или друг  подходящ  фиксатор  веднага  след  
извършването  на аутопсията  и не по-малко  от 24 до 48 часа преди  
почистването  в зависимост  от използвания  фиксатор . 
Таблица  2 
Органи  и тъкани , консервирани  по време  на макроскопската  
аутопсия  
Надбъбречни  жлези  
Костен  мозък  (и/или прясно  фиксиран  
аспират ) 
Мозък  (включително  срезове  от главния  
мозък , малкия  мозък  и моста ) 
[Очи (ретина , оптичен  нерв ) и клепачи ] 
Сърце  
Бъбреци  
Ларинкс  (3 равнища , 1 равнище  следва  да 
включва  основата  на епиглотиса ) 
Черен  дроб  
Бял дроб  (всички  лобове  на едно  равнище , 
включително  главни  бронхи ) 
Лимфни  възли  от областта  на хилуса  на 
белия  дроб , особено  при малко  разтворими  
изпитвани  химикали  под формата  на 
частици  — за по-задълбочени  изследвания  
и/или изследвания  с имунна  насоченост  
могат  да се вземат  предвид  допълнителни  
лимфни  възли , например  от медиастин­  
алната , цервикалната /субмандибуларната  
и/или аурикуларната  области . 
Нософарингсни  тъкани  (най-малко  4 
равнища ; 1 равнище  следва  да включва  
нософарингсния  канал  и назално  
асоциираната  лимфоидна  тъкан  (NALT))  
Хранопровод  
[Обонятелна  луковица ] 
Яйчници  Семенни  мехурчета  
Гръбначен  мозък  (шийно , гръдно  и поясно  
ниво ) 
Далак  
Стомах  
Тестиси  
Тимус  
Щитовидна  жлеза  
Трахея  (най-малко  2 равнища , включващи  1 
Надлъжен  срез през Хребетовидна  структура  
и 1 напречен  срез) 
[Пикочен  мехур ] 
Матка  
Всички  макроскопски  увреждания  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 297
 
41. Белите  дробове  следва  да се отстранят  невредими , да се претеглят  и 
третират  с подходящ  фиксатор  при налягане  от 20—30 cm воден  стълб , 
за да се гарантира  запазване  на структурата  им (5). Срезове  следва  да 
се събират  за всички  лобове  на едно  равнище , включително  главните  
бронхи , но ако е извършен  лаваж  на белия  дроб , следва  да бъдат  
направени  срезове  на три равнища  на лоба , на който  не е извършен  
лаваж  (не серийни  срезове ). 
42. Най-малко  4 равнища  на нософарингсните  тъкани  трябва  да бъдат  
изследвани , едното  от които  следва  да включва  нософарингсния  
канал  (5, 6, 7, 8, 9), за да се даде  възможност  за адекватно  изследване  
на плоския , преходния  (респираторен  без реснички ), респираторния  
(респираторен  с реснички ) и обонятелния  епители , и дрениращата  
лимфна  тъкан  (NALT; 10, 11). Три равнища  на ларинкса  трябва  да 
бъдат  изследвани , като едно  от тези равнища  следва  да включва  
основата  на епиглотиса  (12). Най-малко  две равнища  на трахеята  
следва  да бъдат  изследвани , включително  един  надлъжен  срез през 
хребетовидната  структура  на разклонението  на извънбелодробните  
бронхи  и един  напречен  срез. 
ХИСТОПАТОЛОГИЯ  
43. Следва  да бъде  направена  хистопатологична  оценка  на всички  органи  и 
тъкани , изброени  в таблица  2, за контролната  и експонираната  на 
висока  концентрация  групи , и за всички  животни , които  са умрели  
или са умъртвени  по време  на изследването . Особено  внимание  
следва  да се обърне  на дихателните  пътища , прицелните  органи  и 
макроскопските  увреждания . Органите  и тъканите , които  имат  
увреждания  от групата , експонирана  на висока  концентрация , следва  
да бъдат  изследвани  във всички  групи . Ръководителят  на изследването  
може  да избере  да се извършат  хистопатологични  оценки  за допълн­  
ителни  групи , за да се докаже  ясна  взаимовръзка  концентрация - 
отговор . Когато  се използва  сателитна  група  (за обратимост ), хистопат­  
ологичната  оценка  следва  да се извършва  на всички  тъкани  и органи  с 
показан  ефект  при третираните  групи . Ако са налице  прекомерен  брой  
случаи  на ранна  смърт  или други  проблеми  в групата , експонирана  на 
висока  концентрация , които  застрашават  значимостта  на данните , 
следващата  по-ниска  концентрация  следва  да бъде  хистопатологично  
изследвана . Трябва  да се направи  опит  за съпоставяне  на 
макроскопските  наблюдения  и микроскопските  находки . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
44. Следва  да се предоставят  индивидуалните  данни  за животните  относно  
тяхното  телесно  тегло , консумация  на храна , клинична  патология , 
макроскопска  патология , теглото  на органите  и хистопатология . 
Данните  от клиничните  наблюдения  следва  да бъдат  обобщени  в 
таблична  форма , показваща  за всяка  от изпитваните  групи  броя  на 
използваните  животни , броя  на животните , проявяващи  специфични  
признаци  за токсичност , броя  на животните , намерени  мъртви  по 
време  на изпитването  или умъртвени  по хуманни  причини , времето  
на настъпване  на смъртта  на отделните  животни , описание  и 
изменение  във времето  на токсичните  ефекти  и обратимостта  им, 
както  и находките  при аутопсията . Всички  резултати , количествени  и 
инцидентни , трябва  да бъдат  оценени  с помощта  на подходящ  статист­  
ически  метод . Може  да се използва  всеки  общоприет  статистически  
метод  и статистическите  методи  следва  да бъдат  избрани  при 
планирането  на изследването . 
Доклад  от изпитването  
45. Докладът  от изпитването  по целесъобразност  следва  да включва  
следната  информация : 
Изпитвани  животни  и отглеждане  
— Описание  на условията  в клетките , включително : брой  (или 
промяна  в броя ) на животните  в една  клетка , материал  за постилане , 
температура  и относителна  влажност  на околната  среда , продължит­  
елност  на излагане  на светлина  и идентифициране  на хранителния  
режим . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 298
 
— Използван  вид/порода  и обосновка  за използване  за видове , 
различни  от плъх . Източник  и данни  за минали  периоди  могат  да 
бъдат  предоставени , ако са за животни , експонирани  при сходни  
условия  на експозиция , отглеждане  и режим  на гладуване . 
— Брой , възраст  и пол на животните . 
— Метод  на случаен  подбор . 
— Описание  на всякакво  кондициониране  преди  изпитването , включ­  
ително  хранителен  режим , карантина  и лечение  на заболявания . 
Изпитван  химикал  
— Физична  форма , чистота  и, където  е подходящо , физични  и 
химични  свойства  (включително  изомеризация ). 
— Идентификационни  данни  и номер  съгласно  химичния  регистър  на 
Службата  за химични  индекси  (CAS), ако са известни . 
Носител  
— Обосновка  за използването  на носител  и обосновка  за избора  на 
носителя  (ако е различен  от вода ). 
— Данни  за минали  периоди  или паралелни  данни , доказващи  че 
носителят  не пречи  на резултата  от изследването . 
Инхалационна  камера  
— Подробно  описание  на инхалационната  камера , включително  обем  и 
схема . 
— Източник  и описание  на оборудването , използвано  за експозицията  
на животните , както  и за генерирането  на атмосферата . 
— Оборудване  за измерване  на температурата , относителната  
влажност , размера  на частиците  и действителната  концентрация . 
— Източник  на въздух  и система , използвана  за кондициониране . 
— Използвани  методи  за калибриране  на оборудването  за гарантиране  
на хомогенна  атмосфера  за изпитване . 
— Разлика  в налягането  (положителна  или отрицателна ). 
— Отвори  за експозиция  за всяка  камера  (експозиция  само  през носа ); 
Местоположение  на животните  в камерата  (експозиция  на цялото  
тяло ); 
— Устойчивост  на атмосферата  за изпитване . 
— Разположение  на датчиците  за температура  и относителна  влажност  
и пробовземане  на атмосферата  за изпитване  в камерата . 
— Обработка  на доставяния /извличания  въздух . 
— Скорости  на въздушния  поток , скорост  на въздушния  поток  при 
отвор  за експозиция  (експозиция  само  през носа ) или брой  
животни  на камера  (експозиция  на цялото  тяло ). 
— Време  за уравновесяване  на инхалационната  камера  (t 95 ). 
— Брой  изменения  на обема  на час. 
— Измервателни  прибори  (ако е приложимо ). 
Данни  за експозицията  
— Обосновка  за избора  на целева  концентрация  в основното  
изследване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 299
 
— Номинални  концентрации  (обща  маса  на изпитвания  химикал , 
генерирана  в инхалационната  камера , разделена  на преминалия  
през камерата  обем  въздух ). 
— Действителни  концентрации  на изпитвания  химикал , взети  от 
зоната  на дишане  на животните ; за смеси , които  произвеждат  
хетерогенни  физични  форми  (газове , пари , аерозоли ), всяка  от 
тези форми  може  да бъде  анализирана  отделно . 
— Всички  концентрации  във въздуха  следва  да бъдат  докладвани  в 
единици  масова  концентрация  (mg/l, mg/m  3 и т.н.), а не в единици  
за отношение  на обем  (ppm, ppb и т.н.). 
— Разпределение  на частиците  по размер , аеродинамичен  диаметър  
при медианата  на масата  на частиците  (MMAD) и геометрично  
стандартно  отклонение  (σ g ), включително  методите  за изчис­  
ляването  им. Отделните  анализи  на размерите  на частиците  следва  
да бъдат  докладвани . 
Условия  на изпитването  
— Подробна  информация  за приготвянето  на изпитвания  химикал , 
включително  подробна  информация  за всякакви  процедури , 
използвани  за намаляване  на размера  на частиците  на твърди  
материали  или за приготвяне  на разтвори  на изпитвания  химикал . 
— Описание  (за предпочитане  включващо  схема ) на оборудването , 
използвано  за генериране  на атмосферата  за изпитване  и за 
експозиция  на животните  на атмосферата  за изпитване . 
— Подробна  информация  за оборудването , използвано  за наблюдение  
на температурата , относителната  влажност  и въздушния  поток  в 
камерата  (т.е. разработване  на калибрационна  крива ). 
— Подробна  информация  за оборудването , използвано  за 
пробовземане  за определяне  на концентрацията  и разпределението  
на частиците  по размери  в камерата . 
— Подробна  информация  за използвания  метод  за анализ  на химикала  
и за валидирането  на метода  (включително  и ефикасността  на 
добива  на изпитвания  химикал  от матрицата  на пробата ). 
— Метод  на случаен  подбор  при разпределяне  на животните  в 
изпитвани  и контролни  групи . 
— Подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  тип на хранителния  режим /източник , водоизточник ). 
— Обосновката  за избора  на концентрациите  за изпитване . 
Резултати  
— Таблично  представяне  на данните  за температурата , относителната  
влажност  и въздушния  поток  в камерата . 
— Таблично  представяне  на данните  за номиналната  и действителната  
концентрация  в камерата . 
— Таблично  представяне  на данните  за размера  на частиците , включ­  
ително  аналитични  данни  за пробовземането , за разпределението  на 
частиците  по размери , и изчисления  на MMAD и σ g . 
— Таблично  представяне  на данните  за отговора  и на равнището  на 
концентрацията  за всяко  животно  (т.е. животни , показващи  
признаци  на токсичност , включително  смъртност , природа , сила , 
време  на настъпване  и продължителност  на ефектите ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 300
 
— Таблично  представяне  на данните  за индивидуалното  телесно  тегло . 
— Таблично  представяне  на данните  за консумацията  на храна  
— Таблично  представяне  на данните  от клиничната  патология  
— Находки  при аутопсията  и хистопатологични  находки  за всяко  
животно , ако има такива . 
— Таблично  представяне  на всякакви  други  измерени  параметри  
Дискусия  и интерпретиране  на резултатите  
— Особено  внимание  следва  да се обърне  на описанието  на методите , 
използвани  за спазване  на критериите  на настоящия  метод  за 
изпитване , например  пределната  концентрация , или размера  на 
частиците . 
— В контекста  на цялостните  констатации  следва  да бъде  разгледан  
въпросът  дали  частиците  могат  да бъдат  вдишвани , особено  ако не 
е било  възможно  спазването  на критериите  за размер  на частиците . 
— Съгласуваността  на методите , използвани  за определяне  на номин­  
алните  и действителните  концентрации , както  и отношението  на 
действителната  концентрация  към номиналната  концентрация , 
трябва  да бъдат  включени  в общата  оценка  на изследването . 
— Следва  да бъдат  разгледани  вероятната  причина  за смъртта  и прео­  
бладаващият  начин  на действие  (системно  срещу  локално ). 
— Трябва  да се даде  обосновка , ако е имало  необходимост  от 
умъртвяване  по хуманен  начин  на животни , изпитващи  болка  или 
показващи  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , въз основа  
на критериите  в Ръководството  на ОИСР  за хуманен  край  (3). 
— Трябва  да бъде  идентифициран  прицелният  орган (и). 
— Трябва  да бъдат  определени  нивото  без наблюдаван  неблагоприятен  
ефект  (NOAEL) и най-ниската  доза, при която  се наблюдава  небл­  
агоприятен  ефект  (LOAEL).  
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (1981). Subchronic Inhalation Toxicity Testing, Original Test 
Guideline № 412, Environment Directorate, OECD, Paris.  
(2) OECD (2009). Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing, 
Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 39, ENV/JM/MONO(2009)28, OECD, Paris.
 
(3) OECD (2000). Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals 
Used in Safety Evaluation, Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, 
Paris.
 
(4) Whalan JE and Redden JC (1994). Interim Policy for Particle Size and 
Limit Concentration Issues in Inhalation Toxicity Studies. Office of 
Pesticide Programs, United States Environmental Protection Agency.  
(5) Dungworth DL, Tyler WS, Plopper CE (1985). Morphological Methods for 
Gross and Microscopic Pathology (Chapter 9) in Toxicology of Inhaled Material, Witschi, H.P. and Brain, J.D. (eds), Springer Verlag Heidelberg, pp. 229-258.
 
(6) Young JT (1981). Histopathological examination of the rat nasal cavity. 
Fundam. Appl. Toxicol. 1: 309-312.  
(7) Harkema JR (1990). Comparative pathology of the nasal mucosa in labo ­
ratory animals exposed to inhaled irritants. Environ. Health Perspect. 85: 
231-238.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 301
 
(8) Woutersen RA, Garderen-Hoetmer A, van Slootweg PJ, Feron VJ (1994). 
Upper respiratory tract carcinogenesis in experimental animals and in 
humans. In: Waalkes MP and Ward JM (eds) Carcinogenesis. Target Organ Toxicology Series, Raven Press, New York, 215-263.
 
(9) Mery S, Gross EA, Joyner DR, Godo M, Morgan KT (1994). Nasal 
diagrams: A tool for recording the distribution of nasal lesions in rats and mice. Toxicol. Pathol. 22: 353-372.
 
(10) Kuper CF, Koornstra PJ, Hameleers DMH, Biewenga J, Spit BJ, Duij ­
vestijn AM, Breda Vriesman van PJC, Sminia T (1992). The role of 
nasopharyngeal lymphoid tissue. Immunol. Today 13: 219-224.  
(11) Kuper CF, Arts JHE, Feron VJ (2003). Toxicity to nasal-associated 
lymphoid tissue. Toxicol. Lett. 140-141: 281-285.  
(12) Lewis DJ (1981). Mitotic Indices of Rat Laryngeal Epithelia. Journal of 
Anatomy 132(3): 419-428.  
(13) Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  парламент  и на Съвета  
от 16 декември  2008 година  относно  класифицирането , етикетирането  
и опаковането  на вещества  и смеси , за изменение  и за отмяна  на 
директиви  67/548/ЕИО  и 1999/45/ ЕО и за изменение  на Регламент  
(ЕО) № 1907/2006 ( ОВ L 353, 31.12.2008 г., стр. 1). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 302
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  на 
настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 303
 
Б.9. ТОКСИЧНОСТ  (ДЕРМАЛНА ) С МНОГОКРАТНИ  ДОЗИ  (28 
ДНИ ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  А. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество  се прилага  ежедневно  в продължение  на 
28 дни върху  кожата , в нарастващи  дози  при няколко  групи  
експериментални  животни , като за всяка  група  се използва  по 
една  доза. По време  на експозицията  животните  се наблюдават  
всеки  ден за появата  на симптоми  на токсичното  действие . 
Животните , умрели  по време  на изпитването , се подлагат  на 
аутопсия , а преживелите  се аутопсират  в края  на изпитването . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Подготовка  
Животните  се настаняват  и хранят  в лабораторни  условия  най- 
малко  пет дни преди  началото  на изпитването . Преди  
изпитването  млади  здрави  животни  се избират  по случаен  
начин  и (също  случайно ) се разпределят  на експериментални  и 
контролни  групи . Малко  преди  началото  на изпитването  се 
подстригва  козината  по гръбната  част на тялото . Козината  
може  и да се обръсне , но това се прави  около  24 часа преди  
изпитването . Обикновено  се налага  ежеседмично  подстригване  
или бръснене  на козината , като се внимава  да не се охлузи  
кожата . За прилагането  на изпитваното  вещество  следва  да се 
почистят  не по-малко  от 10 % от повърхността  на тялото . За 
точното  определяне  на площта  от тялото , която  следва  да се 
почисти  от косми , а също  и на размера  на покритието  е необ­  
ходимо  за се вземе  предвид  телесната  маса  на животното . При 
изпитването  на твърди  вещества  (които  могат  да се стрият  до 
прахообразно  състояние , ако се сметне  за необходимо ) 
изпитваното  вещество  следва  добре  да се омокри  с вода  или с 
подходящ  носител , което  осигурява  добър  контакт  с кожата . 
Течните  вещества  по принцип  се прилагат  без разреждане . 
Веществото  се прилага  ежедневно  по пет до седем  дни в седм­  
ицата . 
1.6.2.  Условия  на изпитване  
1.6.2.1.  Опитни  животни  
Може  да се използват  полово  зрели  плъхове , зайци  или морски  
свинчета . Употребата  на други  видове  е също  възможна , но 
следва  да се обоснове . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 304
 
В началото  на изпитването  интервалът  в който  варират  масите  
на животните , не бива  да е по-голям  от ± 20 % от съответната  
средна  стойност . 
1.6.2.2.  Брой  и пол 
При всяко  ниво  на дозиране  се използват  най-малко  10 животни  
(пет женски  и пет мъжки ) със здрава  кожа . Женските  не бива  да 
са раждали , нито  да са бременни . Ако е планирано  част от 
животните  да бъдат  убивани  на междинни  етапи  от 
експеримента , първоначалният  брой  животни  следва  да се 
увеличи  с толкова , колкото  ще бъдат  убити  преди  края  на 
изпитването . Освен  това „сателитна “ група  от 10 животни  (по 
пет от двата  пола ) може  да се третира  с високо  ниво  на дозата  за 
28 дни. В продължение  на 14 дни след  това при тази група  се 
провеждат  наблюдения  за случаи  на обратимост , задържане  или 
забавяне  на токсичните  ефекти . Използва  се също  и сателитна  
контролна  група  от 10 животни  (по пет от двата  пола ). 
1.6.2.3.  Нива  на дозите  
Необходими  са най-малко  три нива  на дозите  и една  контрола  
или контрола  с носител  (ако е използван  носител ). Експозиц­  
ионният  период  следва  да бъде  поне  по шест  часа на ден. Прил­  
агането  на изпитваното  вещество  следва  да става  по едно  и също  
време  на деня ; интервалите  между  експозициите  се регулират  
(на една  или две седмици ), така че да се поддържа  постоянно  
ниво  на дозата  спрямо  телесната  маса  на животните . Животните  
от контролната  група  се третират  по същия  начин , както  и тези 
от експерименталните  групи  с тази разлика , че при тях не се 
прилага  изпитваното  вещество . Когато  за улеснение  на 
дозирането  е използван  носител , животните  от контролната  
група  се третират  с носителя  по същия  начин , както  и 
животните  от третираните  групи , като количеството  на прил­  
ожения  носител  съвпада  с това, получавано  от групата  с най- 
високо  ниво  на дозата . Най-високото  ниво  на дозиране  следва  да 
води  до появата  на токсични  ефекти , но не и (или не в големи  
размери ) да предизвиква  смъртта  на животните . При най- 
ниското  ниво  на дозата  не бива  да се наблюдават  никакви  
признаци  на токсично  действие . Когато  съществува  използваема  
оценка  за експозицията  при хора , най-ниското  ниво  следва  да я 
надвишава . В идеалния  случай  междинното  ниво  на дозата  
следва  да води  до минимални  видими  токсични  ефекти . Ако 
се използват  повече  от една  междинна  доза, то техните  нива  
следва  да са правилно  разпределени  в количествено  отношение , 
така че да се получи  градация  на токсичните  ефекти . Случаите  
на смърт  в групите  с ниско  и междинно  ниво  на дозата , както  и 
в контролните  групи  следва  да са минимален  брой , което  би 
позволило  съдържателна  оценка  на резултатите . 
Ако прилагането  на изпитваното  вещество  предизвиква  силно  
дразнене  на кожата , концентрациите  се намаляват , което  може  
да доведе  до намаление  или отсъствие  на другите  ефекти  от 
токсичното  действие  при високи  нива  на дозата . Нещо  повече , 
ако кожата  е силно  разранена , то е необходимо  изпитването  да 
се прекрати  и да се предприеме  нов опит  при по-ниски  конце­  
нтрации . 
1.6.2.4.  Гранично  изпитване  
Ако предварителното  изпитване  при ниво  на дозата  1 000 mg/kg 
или при по-висока  доза, свързана  с възможна  експозиция  на 
хора  (ако е известна ), не доведе  до токсични  ефекти , то 
повече  изпитвания  могат  да се смятат  за излишни . 
1.6.2.5.  Период  на наблюдение  
Експерименталните  животни  се наблюдават  всеки  ден за 
симптоми  на токсичното  действие . Записват  се времето  на 
смъртта , както  и времената  на поява  и изчезване  на симптомите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 305
 
1.6.3.  Процедура  
Животните  следва  да се разположат  в индивидуални  клетки . 
Третирането  с изпитваното  вещество  в идеалния  случай  става  
по седем  дни в седмицата  в продължение  на 28 дни. 
Животните  от всички  сателитни  групи , предназначени  за продъ­  
лжителни  наблюдения , се оставят  без третиране  още 14 дни, при 
което  се проследява  възстановяването  от токсичните  симптоми  
или тяхното  устойчиво  задържане . Времето  за експозиция  
следва  да бъде  поне  шест  часа на ден. 
Изпитваното  вещество  се прилага  на равномерен  слой  върху  
площ  приблизително  10 % от телесната  повърхност . При 
вещества  с висока  токсичност  покритата  площ  може  да бъде  и 
по-малка , но във всички  случаи  тя следва  да се покрие  с колкото  
е възможно  по-тънък  и равномерен  пласт . 
По време  на експозицията  изпитваното  вещество  се задържа  в 
контакт  с кожата  с помощта  на марлена  превръзка  и лепенка , 
която  не дразни  кожата . Мястото  на прилагане  на веществото  се 
покрива  допълнително  по подходящ  начин , така че превръзката  
и веществото  да се задържат  стабилно  и освен  това да се 
предотврати  поглъщането  на веществото  от животното . За 
целта  могат  да се използват  приспособления  за ограничаване  
на движенията , но пълното  обездвижване  не се препоръчва . 
Може  да се използва  и „защитен  обездвижващ  нашийник “. 
В края  на периода  на експозиция  останалото  изпитвано  
вещество  се отстранява , ако може , с вода  или кожата  се 
почиства  по друг  подходящ  начин . 
Провежда  се ежедневно  наблюдение  на всички  животни  и 
симптомите  на токсичното  действие  се записват  заедно  с 
времето  на появата  им, техните  острота  и продължителност . 
Наблюденията  следва  да включват  изменения  в кожата  и 
козината , очите  и лигавиците , както  и промените  в дихателната , 
кръвоносната , автономната  и централната  нервна  система , 
соматомоторната  активност  и поведението . Масата  на 
животните  следва  да се измерва  всяка  седмица . Препоръчва  се 
също  всяка  седмица  да се измерва  и консумацията  на храна . 
Редовното  наблюдаване  на животните  е необходимо  и за да се 
избегне  загубата  на животни  по такива  причини , като 
канибализъм , автолиза  на тъканите  или неправилно  положение  
в клетката . В края  на проучвателния  период  всички  оцелели  
животни  от основните  (несателитните ) третирани  групи  се 
подлагат  на аутопсия . Умиращите  животни , както  и животните  
с признаци  на тежък  стрес  или болка  следва  да се отстраняват  от 
изпитването  в момента , в който  са забелязани , да бъдат  убивани  
безболезнено  и подлагани  на аутопсия . 
Изброените  по-долу  анализи  се правят  в края  на теста  на всички  
животни , включително  тези от контролните  групи : 
1) хематологични  анализи , които  да включват  най-малко  хемат­  
окрит , концентрация  на хемоглобина , брой  на еритроцитите , 
общо  и диференциално  броене  на левкоцитите  и измерване  
потенциала  на съсирване ; 
2) клинична  биохимия  на кръвта , в това число  поне  по един  
параметър  за чернодробна  и бъбречна  функция : серумна  
аланин  аминотрансфераза  (първоначално  известна  като 
глутамат  пируват  трансаминаза ), серумна  аспартат  
аминотрансфераза  (първоначално  позната  като глутамат  
оксалоацетат  трансаминаза ), карбамиден  азот, албумин , 
кръвен  креатинин , общ билирубин  и общ белтък  в серума . 
Други  анализи , които  може  да са необходими  за правилната  
токсикологична  оценка , са следните : калций , фосфор , хлориди , 
натрий , калий , глюкоза  при гладуване , анализ  на липиди , 
хормони , киселинно -основен  баланс , метхемоглобин  и холин­  
естеразна  активност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 306
 
Когато  е необходимо , за разширяване  на изпитванията  върху  
наблюдаваните  ефекти  може  да се включат  и допълнителни  
клинични  биохимични  анализи . 
1.6.4.  Аутопсия  
Всички  животни , участвали  в изпитването , следва  да се 
подложат  на пълна  макроскопска  аутопсия . Най-малко  черният  
дроб , бъбреците , надбъбречните  жлези  и тестисите  се претеглят  
във влажно  състояние , колкото  е възможно  по-бързо  след  
дисекцията  (така че да не изсъхват ). Някои  органи  и тъкани , 
т.е. нормална  и третирана  кожа , черен  дроб , бъбрек , слезка , 
тестиси , надбъбречни  жлези , сърце  и критични  органи  (т.е. 
онези  органи , които  показват  видими  поражения  или 
изменения  в размерите ) следва  да се запазят  в подходяща  
среда  за възможно  бъдещо  хистопатологично  изпитване . 
1.6.5.  Хистопатологично  изпитване  
В групата  с високо  ниво  на дозата , както  и в контролната  група  
се правят  хистопатологични  изпитвания  на запазените  органи  и 
тъкани . Органите  и тъканите , които  показват  дефекти , свързани  
с действието  на изпитваното  вещество  при най-високата  доза, 
следва  да се изпитват  и във всички  групи  с по-ниски  нива  на 
дозиране . При хистологичното  изпитване  на животните  от 
сателитната  група  особено  внимание  се отделя  на онези  
органи  и тъкани , при които  са наблюдавани  ефекти  в останалите  
третирани  групи . 
2. ДАННИ  
Данните  се обобщават  в таблична  форма , като за всяка  
изпитвана  група  се дават  броят  на животните  в началото  на 
изпитването  и броят  на животните , показали  различните  
видове  увреждания . 
Всички  наблюдавани  резултати  се обработват  с подходящ  
статистически  метод . Може  да се използва  всеки  от 
общоприетите  статистически  методи . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  следва  по възможност  да съдържа  
следната  информация : 
— данни  за животните  (вид, порода , източник , условия  на 
средата , диета  и др.); 
— условия  на изпитване  (включително  видът  на превръзката : 
оклузивна  или неоклузивна ); 
— нива  на дозиране  (в това число  и носителя , ако е използван ) 
и концентрации ; 
— когато  е възможно , се указва  и нивото , при което  не се 
наблюдават  ефекти ; 
— данни  за отговора  на токсичното  действие  по пол и доза; 
— време  на смъртта  в процеса  на изпитването  или дали  
животните  са преживели  до края  на изпитването ; 
— токсични  или други  ефекти ; 
— време  на наблюдаване  на всеки  аномален  признак  и неговото  
следващо  развитие ; 
— данни  за храната  и телесната  маса ; 
— използвани  хематологични  анализи  и резултатите  от тях; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 307
 
— използвани  клинични  биохимични  анализи  и резултатите  от 
тях; 
— находки  при аутопсията ; 
— детайлно  описание  на всички  хистопатологични  находки ; 
— статистическа  обработка  на резултатите  (когато  е възможна ); 
— обсъждане  на резултатите ; 
— интерпретиране  на резултатите . 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  Г. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вж. Общо  въведение , част Б, буква  Д. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 308
 
Б.10. МУТАГЕННОСТ  — ТЕСТ  ИН ВИТРО  ЗА ХРОМОЗОМНИ  
АБЕРАЦИИ  ПРИ  БОЗАЙНИЦИ  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е изцяло  подобен  на теста  in vitro  за 
хромозомни  аберации  при бозайници  на OECD TG 473 от 
1997 г. 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на теста  in vitro  за хромозомни  аберации  е да се идент­  
ифицират  агентите , причиняващи  структурни  хромозомни  
аберации  в култивирани  клетки  от бозайници  (1) (2) (3). 
Структурните  аберации  могат  да бъдат  два типа : хромозомни  
и хроматидни . При повечето  химични  мутагени  индуцираните  
аберации  са от хроматиден  тип, но се срещат  също  и аберации  
от хромозомен  тип. Увеличение  в полиплоидията  може  да е 
показателно  за това, че един  химикал  има потенциал  да 
предизвиква  геномни  аберации . Все пак настоящият  метод  не 
е предназначен  да измерва  геномни  аберации  и не се използва  
рутинно  за тази цел. Хромозомните  мутации  и свързаните  с тях 
събития  са причината  за много  генетични  болести  при човека , а 
има реални  доказателства , че хромозомните  мутации  и 
свързаните  с тях събития , които  водят  до промени  в онкогените  
и тумороподтискащите  гени  на соматични  клетки , участват  в 
причиняването  на рак при хора  и опитни  животни . 
За in vitro  теста  за хромозомни  аберации  могат  да се използват  
култури  на доказани  клетъчни  линии , клетъчни  щамове  или 
първични  клетъчни  култури . Клетките  се избират  въз основа  
на способността  на растеж  в културата , стабилността  на 
кариотипа , броя  на хромозомите , хромозомното  разнообразие  и 
спонтанната  честота  на хромозомни  аберации . 
Тестове , провеждани  in vitro,  no принцип  изискват  използването  
на екзогенен  източник  на метаболична  активация . Тази  система  
на метаболична  активация  не може  изцяло  да възпроизведе  in 
vivo условията  при бозайници . Следва  внимателно  да се избягват  
условия , които  биха  довели  до положителни  резултати , 
неотразяващи  свойствена  мутагенност  и които  биха  могли  да 
възникнат  от промени  на рН, осмотично  налягане  или високи  
нива  на цитотоксичност  (4) (5).  
Настоящият  тест се използва  за откриване  на евентуални  
мутагени  и канцерогени  при бозайници . Много  съединения , 
които  са положителни  в настоящия  тест, са канцерогени  за боза­  
йници ; все пак няма  идеално  съответствие  между  настоящия  
тест и канцерогенността . Съответствието  зависи  от химичния  
клас, а се появяват  все повече  доказателства , че съществуват  
канцерогени , които  не се откриват  с настоящия  тест, тъй като 
очевидно  те действат  чрез други  механизми , различни  от 
прякото  увреждане  на ДНК . 
Вижте  също  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Хроматиден  тип аберация : структурно  увреждане  на хромо­  
зомата , изразяващо  се в разкъсване  на единични  хроматиди  
или разкъсване  и повторно  съединяване  между  хроматиди . 
Хромозомен  тип аберация : структурно  увреждане  на хромо­  
зомата , изразяващо  се в разкъсване , или разкъсване  и повторно  
съединяване  на двата  хроматида  от една  и съща  страна . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 309
 
Ендоредупликация : процес , при които  след  период  S на ДНК  
репликация  ядрото  не навлиза  в митоза , а започва  друг  S 
период . Резултатът  е хромозоми  с 4, 8, 16, … хроматиди . 
Празнина : ахроматично  увреждане , по-малко  от ширината  на 
един  хроматид  с минимална  несъосност  на хроматидите . 
Митотичен  индекс : съотношението  на клетки  в метафаза , 
разделени  на броя  клетки , наблюдавани  в клетъчна  популация ; 
показател  за степента  на пролиферация  на тази популация . 
Гсномна  аберация : промяна  в броя  на хромозомите  в 
сравнение  с нормалния  брой , характерен  за използваните  клетки . 
Полиплоидия : множимо  на хаплоидния  брой  хромозоми  (n), 
различно  от диплоидния  брой  (т.е. 3n, 4n и т.н.). 
Структурна  аберация : промяна  в хромозомната  структура , 
която  се открива  при микроскопско  изследване  на етапа  на 
метафаза  на клетъчното  деление , наблюдавана  във вид на 
заличавания  и фрагменти , вътрешнохромозомни  или 
междухромозомни  изменения . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
Клетъчни  култури  се подлагат  на въздействието  на тестваното  
вещество  със и без метаболична  активизация . На предварително  
определени  интервали  след  експозицията  на клетъчните  култури  
към тестваното  вещество  те се третират  с блокиращо  метафазата  
вещество  (напр . Колцемид ® или колхицин ), събират  се, 
оцветяват  се и метафазните  клетки  се анализират  под 
микроскоп  за наличието  на хромозомни  аберации . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
1.4.1.  Подготовка  
1.4.1.1.  Клетки  
Могат  да се използват  разнообразни  клетъчни  линии , щамове  
или първични  клетъчни  култури , включително  и човешки  
клетки  (напр . фибробласти  от китайски  хамстер , лимфоцити  от 
периферна  кръв  на хора  или други  бозайници ). 
1.4.1.2.  Хранителни  среди  и условия  за отглеждане  на културата  
При отглеждането  на културата  следва  да се използват  
подходящи  хранителни  среди  и инкубационни  условия  
(носители  на културата , концентрация  на СО 2 , температура  и 
влажност ). Доказаните  клетъчни  линии  и щамове  следва  да се 
проверяват  редовно  за стабилност  на модалния  хромозомен  брой  
и отсъствие  на микоплазмено  замърсяване , а ако са замърсени , 
не следва  да се използват . Следва  да се знае нормалното  време  
на клетъчен  цикъл  при клетките  и използваните  условия  за 
отглеждане  на културата . 
1.4.1.3.  Приготвяне  на културите  
Установени  клетъчни  линии  и щамове : от изходни  култури  се 
размножават  клетки , посяват  се в хранителна  среда  с такава  
гъстота , че културите  да не достигат  точката  на сливане  преди  
времето  на обиране , и се инкубират  при 37  o С. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 310
 
Лимфоцити : цялостна  кръв , третирана  с антикоагулант  (напр . 
хепарин ), или сепарирани  лимфоцити , получени  от здрави  
субекти , се добавят  към хранителната  среда , съдържаща  
митоген  (напр . фитохемаглутинин ), и се инкубират  при 37  o С. 
1.4.1.4.  Метаболична  активация  
Клетките  следва  да се излагат  на тестваното  вещество  както  в 
присъствието , така и в отсъствието  на подходяща  система  за 
метаболична  активация . Най-често  използваната  система  е 
постмитохондрична  фракция  (S9) с добавка  на ко-фактор , приг­  
отвена  от черните  дробове  на гризачи , третирани  с ензимно  
индуциращи  реактиви , като Ароклор  1254 (6) (7) (8) (9) или 
смес  от фенобарбитон  и β-нафтофлавон  (10) (11) (12).  
Постмитохондричната  фракция  обичайно  се използва  в конце­  
нтрации  с обхват  от 1 до 10 % v/v в последната  тестова  среда . 
Състоянието  на система  за метаболична  активация  може  да 
зависи  от изпитвания  химикал . В някои  случаи  може  да е 
подходящо  да се прилага  повече  от една  концентрация  на постм­  
итохондрична  фракция . 
Редица  разработки , включително  изграждането  на клетъчни  
линии  чрез генно  инженерство , изразяващи  специфични  
активизиращи  ензими , могат  да осигурят  възможности  за 
ендогенна  активация . Изборът  на използваните  клетъчни  линии  
следва  да е научно  обоснован  (напр . чрез приложимостта  на 
изоензим  цитохром  Р450 за метаболизма  на тестваното  
вещество ). 
1.4.1.5.  Тествано  вещество /подготовка  
Твърдите  вещества  за теста  следва  да се разтворят  или 
суспендират  в подходящи  разтворители  или носители  и, ако е 
необходимо , да се разредят  преди  третирането  на клетките . 
Течните  тествани  вещества  могат  да се добавят  директно  към 
тестовите  системи  и/или да се разредят  преди  третирането . 
Следва  да се използват  пресни  препарати  на тестваното  
вещество , освен  ако данните  за устойчивостта  му не показват , 
че може  да се съхранява . 
1.4.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.4.2.1.  Разтворител /носител  
Не следва  да има съмнения  за химическа  реакция  на 
разтворителя /носителя  с тестваното  вещество  и той следва  да е 
съвместим  с оцеляването  на клетките  и активността  на S9. Ако 
се използват  други  освен  добре  познатите  разтворители /­ 
носители , включването  им в теста  следва  да се подкрепи  от 
данни  за съвместимостта  им. Препоръчва  се винаги  когато  е 
възможно , първо  да се разглежда  възможността  за прилагането  
на воден  разтворител /носител . При тестването  на вещества , 
нестабилни  във вода , използваните  органични  разтворители  не 
следва  да съдържат  вода . Водата  може  да се отстрани  чрез доба­  
вянето  на молекулно  сито . 
1.4.2.2.  Концентрации  на експозицията  
Измежду  критериите , които  следва  да се имат  предвид  при 
определянето  на най-високите  концентрации , са цитотоксич­  
ността , разтворимостта  в тестовата  система  и промените  в рН 
или осмотичното  налягане . 
Цитотоксичността  следва  да се определи  със и без метаболична  
активация  в главния  експеримент , като се използва  подходяща  
индикация  на клетъчната  цялост  и растеж , като степен  на 
сливане , количества  жизнеспособни  клетки  или митотичен  
индекс . Може  да бъде  полезно , ако се определят  цитотоксич­  
ността  и разтворимостта  в предварителен  експеримент . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 311
 
Следва  да се използват  най-малко  три концентрации , които  
могат  да бъдат  подложени  на анализ . Там, където  се среща  
цитотоксичност , тези три концентрации  следва  да покриват  
обхват  от максимална  до слаба  или липса  на токсичност ; това 
обикновено  означава , че концентрациите  следва  да се различават  
с коефициент  не повече  от 2 до √10. В момента  на събиране  на 
реколтата  най-високата  концентрация  следва  да показва  знач­  
ително  намаляване  на степента  на сливане , клетъчния  брой  
или митотичния  индекс  (всички  са повече  от 50 %). Митот­  
ичният  индекс  е само  едно  косвено  мерило  за цитотоксичните /­ 
цитостатичните  ефекти  и зависи  от времето  след  третирането . 
Все пак митотичният  индекс  е приложим  за суспензионни  
култури , при които  други  начини  на измерване  на токсичността  
могат  да се окажат  неудобни  и непрактични . Информацията  за 
клетъчната  кинетика , като например  средно  генерационно  време  
(СГВ ), може  да се използва  като допълваща  информация . СГВ  
обаче  е едно  общо  средно  число , което  не винаги  е показателно  
за съществуването  на забавени  субпопулации , а дори  съвсем  
малко  увеличение  на средното  генерационно  време  може  да се 
свърже  с особено  голямо  забавяне  на времето  на оптимален  
добив  на аберации . 
За относително  нецитотоксични  вещества  максималната  тестова  
концентрация  следва  да е 5μl/ml, 5 mg/ml или 0,01 М, в 
зависимост  от това коя е най-ниска . 
За относително  неразтворими  вещества , които  не са токсични  в 
концентрации , по-ниски  от неразтворимата  концентрация , най- 
високата  използвана  доза следва  да е в концентрация  над 
границата  на разтворимост  в последната  хранителна  среда  в 
края  на периода  на третиране . В някои  случаи  (напр . когато  
токсичността  се получава  само  с концентрация , по-висока  от 
най-ниската  неразтворима  концентрация ), препоръчително  е 
тестът  да се провежда  при повече  от една  концентрация  с 
видимо  утаяване . Полезно  би било  разтворимостта  да се 
прецени  в началото  и в края  на обработването , тъй като разт­  
воримостта  може  да се измени  по време  на курса  на експозиция  
в тестовата  система  поради  наличието  на клетки , серум  S9 и др. 
Неразтворимостта  може  да се установи  и с просто  око. Прецип­  
итатът  не следва  да пречи  на отчитането . 
1.4.2.3.  Отрицателни  и положителни  контроли  
Във всеки  експеримент  следва  да се включат  паралелни  полож­  
ителни  и отрицателни  (разтворител  или носител ) контроли , със и 
без метаболична  активация . Когато  се прилага  метаболична  
активация , химикалът  за положителен  контрол  следва  да е 
такъв , че да изисква  активация , за да произведе  мутагенна  
реакция . 
За извършване  на положителни  контроли  следва  да се използва  
известен  еластоген  при нива  на експозиция , при които  се очаква  
да се достигне  репродуцируемо  и забележимо  увеличение  
спрямо  фон, показващ  нагледно  чувствителността  на тестовата  
система . 
Концентрациите  на положителен  контрол  следва  да са така 
избрани , че ефектите  да са ясни , но да не разкриват  
непосредствено  на четящото  устройство  идентичността  на 
кодираните  предметни  стъкла . Примерите  за положителни  
контролни  вещества  включват : 
Метаболична  активация  Вещество  CAS № Einecs № 
Отсъствие  на екзогенна  мета­  
болична  активация  Метил  метансулфонат  66-27-3 200-625-0 
Етил  метансулфонат  62-50-0 200-536-7  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 312
 
Метаболична  активация  Вещество  CAS № Einecs № 
Етил  нитрозокарбамид  759-73-9 212-072-2 
Митомицин  С 50-07-7 200-008-6 
4-нитрохинолин -N-оксид  56-57-5 200-281-1 
Наличие  на екзогенна  мета­  
болична  активация  бензо [а]пирен  50-32-8 200-028-5 
Циклофосфамид  
Циклофосфамид  монохидрат  50-18-0 
6055-19-2 200-015-4  
Могат  да се използват  други  подходящи  положителни  
контролни  вещества . За положителна  контрола  следва  да се 
взема  предвид  използването  на химикали , принадлежащи  към 
химичен  клас, когато  такива  са налични . 
Отрицателните  контроли , състоящи  се само  от разтворител  или 
носител  в средата , в която  се извършва  обработването , и 
третирани  по същия  начин  като културите , които  се обработват , 
следва  да се включат  за всяко  прибиране  на клетъчна  реколта . В 
допълнение  към това следва  също  да се използват  нетретирани  
контроли , освен  ако няма  контролни  данни  от предишни  
изследвания , показващи , че от избрания  разтворител  не се 
предизвикват  делеционни  или мутагенни  ефекти . 
1.4.3.  Процедура  
1.4.3.1.  Третиране  с тестваното  вещество  
Пролифериращите  клетки  се обработват  с тестваното  вещество  
при наличието  и при отсъствието  на метаболична  активационна  
система . Третирането  на лимфоцити  следва  да започне  около  48 
часа след  митогенната  стимулация . 
1.4.3.2. Нормално  за всяка  концентрация  следва  да е използването  на 
дубликатни  култури , а те са силно  препоръчителни  и за 
отрицателни /разтворителни  контролни  култури . Когато  на 
базата  на данни  от предишни  изследвания  може  да се демо­  
нстрира  минимално  вариране  между  дубликатни  култури  (13) 
(14), би могло  да се приеме  използването  на една  култура  за 
всяка  концентрация . 
Газообразни  или летливи  вещества  следва  да се тестват  чрез 
подходящи  методи , като например  в запечатани  носители  на 
културата  (15) (16).  
1.4.3.3.  Време  за събиране  на реколтата  от културата  
В първия  експеримент  клетките  следва  да се експонират  на 
въздействието  на тестваното  вещество  както  със, така и без 
метаболична  активация , в продължение  на 3 до 6 часа и да се 
вземе  проба  след  време , равно  на около  1,5 пъти  от нормалната  
продължителност  на клетъчния  цикъл  след  началото  на 
третирането  (12). Ако тази процедура  дава отрицателни  
резултати  както  със, така и без активация , следва  да се 
извърши  допълнителен  експеримент  без активация , с 
непрекъснато  третиране  до вземането  на проба  след  време , 
равно  на около  1,5 пъти  от нормалната  продължителност  на 
клетъчния  цикъл . Някои  химични  вещества  могат  по-лесно  да 
се различат  при периоди  на обработване /вземане  на проба , по- 
дълги  от 1,5 пъти  от продължителността  на клетъчния  цикъл . 
Отрицателните  резултати  с метаболична  активация  следва  да се 
потвърдят  за всеки  случай  поотделно . В случаите , когато  се 
смята , че не е необходимо  потвърждаването  на отрицателни  
резултати , това следва  да е обосновано . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 313
 
1.4.3.4.  Подготовка  на хромозомите  
Клетъчните  култури  се третират  с Колцемид  ® или колхицин  
обикновено  в продължение  на 1 до 3 часа преди  събирането  на 
реколтата . Всяка  клетъчна  култура  се обира  и обработва  отделно  
за подготовката  на хромозомите . Подготовка  на хромозомите  
включва  хипотонично  третиране  на клетките , фиксиране  и 
оцветяване  
1.4.3.5.  Анализ  
Всички  предметни  стъкла , включително  и тези на положит­  
елните  и отрицателните  контроли , следва  да се кодират  
независимо  едно  от друго  преди  микроскопския  анализ . Тъй 
като процедурите  на фиксиране  водят  често  до разкъсване  на 
част от метафазните  клетки  със загуба  на хромозоми , отчетените  
клетки  следва  да съдържат  известен  брой  центромери , равен  на 
модалния  брой  ± 2 за всички  клетъчни  типове . Следва  да се 
отчетат  най-малко  200 добре  разнесени  метафази  за всяка  конце­  
нтрация  и контрола , разделени  поравно  между  дубликатите , ако 
това е приложимо . Този  брой  може  да се намали , когато  се 
наблюдава  голям  брой  аберации . 
Въпреки  че целта  на теста  е да се открият  структурни  
хромозомни  аберации , от значение  е да се регистрират  полип­  
лоидия  и ендоредупликация , когато  тези събития  се наблюдават . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Експерименталната  единица  е клетката  и по тази причина  следва  
да се оценява  процентът  на клетки  със структурна (и) хромозо­  
мна(и) аберация (и). Следва  да се изготвят  списъци  на различни  
типове  структурни  хромозомни  аберации  с техния  брой  и 
честоти  при експерименталните  и контролните  култури . 
Празнините  се отбелязват  отделно  и се протоколират , но по 
принцип  не се включват  в общата  честота  на аберациите . 
Следва  също  да се документират  съпътстващите  измервания  на 
цитотоксичността  за всички  третирани  и отрицателни  контролни  
култури  в главните  опити  за аберации . 
Следва  да се осигурят  данни  за отделните  култури . Освен  това 
всички  данни  следва  да се резюмират  в табличен  вид. 
Няма  изискване  за потвърждаване  на ясна  положителна  реакция . 
Двузначните  резултати  следва  да се изяснят  чрез допълнително  
тестване , като за предпочитане  е условията  на опита  да се 
модифицират . Необходимостта  от потвърждаване  на отриц­  
ателни  резултати  е разгледана  в т. 1.4.3.3. Изменението  на 
параметрите  на изследването  с цел разширяване  на обхвата  на 
изследваните  условия  следва  да се има предвид  при 
последващите  експерименти . Параметрите  на изследването , 
които  могат  да се изменят , включват  границите  на конце­  
нтрацията  и условията  на метаболична  активация . 
2.2. ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , 
като например  увеличение , свързано  с концентрацията , или 
репродуцируемо  увеличение  в броя  на клетки  с хромозомни  
аберации . Първо , следва  да се вземе  предвид  биологичната  
значимост  на резултатите . При оценката  на резултатите  от теста  
биха  могли  да се използват  статистически  методи  (3) (13). 
Статистическата  значимост  не следва  да е единственият  
решаващ  фактор  за положителна  реакция . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 314
 
Едно  увеличение  в броя  на полиплоидни  клетки  може  да 
показва , че тестваното  вещество  е способно  да инхибира  
митотични  процеси  и да индуцира  многобройни  хромозомни  
аберации . Увеличение  в броя  на клетки  с ендоредуплицирани  
хромозоми  може  да е показателно  за способността  на тестваното  
вещество  да инхибира  прогресията  на клетъчния  цикъл  (17) (18).  
Тествано  вещество , за което  резултатите  не удовлетворяват  
горните  критерии , се смята  немутагенно  в настоящата  система . 
Въпреки  че повечето  опити  дават  ясно  положителни  или отриц­  
ателни  резултати , в редки  случаи  получените  данни  изключват  
възможността  да се направи  категорична  преценка  за актив­  
ността  на тестваното  вещество . Резултатите  могат  да останат  
неясни  или под въпрос , независимо  от това колко  пъти  е 
повторен  опитът . 
Положителните  резултати  от теста  ин витро  за хромозомни  
аберации  показват , че тестваното  вещество  индуцира  структурни  
хромозомни  аберации  в култивирани  соматични  клетки  на боза­  
йници . Отрицателните  резултати  показват , че при условията  на 
теста  изследваното  вещество  не предизвиква  хромозомни  
аберации  в култивирани  соматични  клетки  на бозайници . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  следва  да съдържа  следната  информация : 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на носител , 
— разтворимост  и стабилност  на тестваното  вещество  в 
разтворител /носител , ако са известни . 
Клетки : 
— тип и източник  на клетки , 
— кариотипни  особености  и дали  използваният  тип клетки  е 
подходящ , 
— отсъствие  на микоплазма , ако е приложимо , 
— информация  за продължителността  на клетъчния  цикъл , 
— пол на кръвните  донори , цялостна  кръв  или изолирани  
лимфоцити , използван  митоген , 
— брой  на пасажи , ако е приложим , 
— методи  за поддържане  на клетъчна  култура , ако са прил­  
ожими , 
— модален  брой  на хромозомите . 
Условия  за провеждане  на теста : 
— идентичност  на веществото , блокиращо  метафазата , конце­  
нтрация  и времетраене  на експозицията  на клетките , 
— основна  причина  за избора  на концентрации  и брой  култури , 
в т.ч. напр . цитотоксични  данни  и ограничения  за разтворим­  
остта , ако са налични , 
— състав  на средите , СО 2 концентрация , ако са приложими , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 315
 
— концентрация  на тестваното  вещество , 
— общ обем  на носителя  и тестваното  вещество , 
— температура  на инкубация , 
— време  на инкубация , 
— времетраене  на третирането , 
— гъстота  на клетките  при посяване , ако е необходимо , 
— тип и състав  на система  за метаболична  активация , в.т.ч. 
критериите  за приемливост , 
— положителни  и отрицателни  контроли , 
— методи  на подготовка  на предметно  стъкло , 
— критерии  за отчитане  на аберации , 
— брой  на анализираните  метафази , 
— методи  за измерване  на токсичността , 
— критерии  за приемане  на проучванията  за положителни , 
отрицателни  или двузначни , 
Резултати : 
— признаци  на токсичност , напр . степен  на сливане , данни  за 
клетъчния  цикъл , клетъчно  броене , митотичен  индекс , 
— признаци  на утаяване , 
— данни  за рН и осмотичното  налягане  на средата  за тестване , 
ако са определени , 
— дефиниция  за аберации , в т.ч. празнини , 
— брой  на клетки  с хромозомни  аберации  и тип на хромо­  
зомните  аберации , дадени  отделно  за всяка  третирана  и 
контролна  култура , 
— изменения  в полиплоидията , ако се наблюдават , 
— взаимоотношение  доза/реакция , при възможност , 
— статистически  анализ , ако има такъв , 
— данни  от паралелни  отрицателни  (разтворител /носител ) и 
положителни  контроли , 
— данни  от предишни  изследвания  от отрицателни  
(разтворител /носител ) и положителни  контроли , с обхвати , 
средни  стойности  и стандартни  отклонения . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Evans, H. J. (1976), Cytological Methods for Detecting 
Chemical Mutagens, w:  Chemical mutagens, Principles and 
Methods for their Detection,  Vol. 4, Hollaender, A. (ed) 
Plenum Press, New York and London, pp. 1—29.  
(2) Ishidate, M. Jr. and Sofumi, T. (1985), The  In Vitro  Chro­
mosomal Aberration Test Using Chinese Hamster Lung (CHL) Fibroblast Cells in Culture, in:  Progress in Mutation 
Research,  Vol. 5, Ashby, J. et al., (eds) Elsevier Science 
Publishers, Amsterdam-New York-Oxford, pp. 427—432.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 316
 
(3) Galloway, S. M., Armstrong, M. J., Reuben, C, Colman, S., 
Brown, B., Cannon, C, Bloom, A. D., Nakamura, F., Ahmed, 
M., Duk, S., Rimpo, J., Margolin, G. H., Resnick, M. A., Anderson, G. and Zeiger E. (1978), Chromosome aberration and sister chromatic exchanges in Chinese hamster ovary cellS: 
Evaluation of 108 chemicals,  Environs, Molec. Mutagen  10 
(suppl.10), pp. 1—175.
 
(4) Scott, D., Galloway, S. M., Marshall, R. R., Ishidate, M. Jr., 
Brusick, D., Ashby, J. and Myhr, B. C. (1991), Genotoxicity under Extreme Culture Conditions. A report from ICPEMC Task Group 9,  Mutation Res.,  257, pp. 147—204.
 
(5) Morita, T., Nagaki, T., Fukuda, I. and Okumura, K., (1992), 
Clastogenicity of low pH to Various Cultured Mammalian 
Cells,  Mutation  Res., 268, pp. 297—305.  
(6) Ames, B. N., McCann, J. and Yamasaki, E. (1975), Methods 
for Detecting Carcinogens and Mutagens with the 
Salmonella/Mammalian Microsome Mutagenicity Test,  
Mutation Res.,  31, pp. 347—364.  
(7) Maron, D. M. and Ames, B. N. (1983), Revised Methods for 
the Salmonella Mutagenicity Test,  Mutation Res.,  113, pp. 
173—215.  
(8) Natarajan, A. T., Tates, A. D., van Buul, P. P. W., Meijers, M. 
and de Vogel, N. (1976), Cytogenetic Effects of Mutagen/ ­
Carcinogens after Activation in a Mircrosomal System  In 
Vitro,  I. Induction of Chromosome Aberrations and Sister 
Chromatid Exchange by Diethylnitrosamine (DEN) and Dimet ­
hylnitrosamine (DMN) in CHO Cells in the Presence of Rat- 
Liver Microsomes,  Mutation Res.,  37, pp. 83—90.  
(9) Matsuoka, A., Hayashi, M. and Ishidate, M. Jr. (1979), Chro ­
mosomal Aberration Tests on 29 Chemicals Combined with S9 
Mix In Vitro, Mutation Res.,  66, pp. 277—290.  
(10) Elliot, B. M., Combes, R. D., Elcombe, C. R., Gatehouse, D. 
G., Gibson, G. G., Mackay, J. M. and Wolf, R. C. (1992), Report of UK Environmental Mutagen Society Working Party. Alternative to Aroclor 1254-induced S9 in In Vitro Genoto ­
xicity Assays,  Mutagenesis, 7,  pp. 175—177.
 
(11) Matsushima, T., Sawamura, M., Hara, K. and Sugimura, T. 
(1976), A. Safe Substitute for Polychlorinated Biphenyls 
as an Inducer of Metabolic Activation Systems, in: de Serres, F. J. Fouts, J. R. Bend, J. R. and Philpot, R. M. (eds), In Vitro  
Metabolic Activation in Mutagenesis Testing,  Elsevier, North- 
Holland, pp. 85—88.
 
(12) Galloway, S. M., Aardema, M. J., Ishidate, M. Jr., Ivett, J. L., 
Kirkland, D. J. Morita, T., Mosesso, P., Sofumi, T. (1994), 
Report from Working Group on in  In Vitro  Tests for Chro ­
mosomal Aberrations,  Mutation Res.,  312, pp. 241—261.  
(13) Richardson, C, Williams, D. A., Allen, J. A., Amphlett, G., 
Chanter, D. O. and Phillips, B. (1989), Analysis of Data from In Vitro Cytogenetic Assays, w:  Statistical Evaluation of 
Mutagenicity Test Data,  Kirkland, D. J., (cd) Cambridge 
University Press, Cambridge, pp. 141—154.
 
(14) Soper, K. A. and Galloway, S. M. (1994), Replicate Flasks are 
not Necessary for  In Vitro  Chromosome Aberration Assays in 
CHO Cells,  Mutation Res.,  312, pp. 139—149.  
(15) Krahn, D. F., Barsky, F. C. and McCooey, K. T. (1982), 
CHO/HGPRT Mutation Assay: Evaluation of Gases and Volatile Liquids, in: Tice, R. R., Costa, D. L., Schaich, K. 
M. (eds),  Genotoxic Effects of Airborne Agents,  New York, 
Plenum, pp. 91—103.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 317
 
(16) Zamora, P. O., Benson, J. M., Li, A. P. and Brooks, A. L. 
(1983), Evaluation of an Exposure System Using Cells Grown 
on Collagen Gels for Detecting Highly Volatile Mutagens in the CHO/HGPRT Mutation Assay,  Environmental Mutage ­
nesis,  5, pp. 795—801.
 
(17) Locke-Huhle, C. (1983), Endoreduplication in Chinese hamster 
cells during alpha- radiation induced G2 arrest,  Mutation Res.,  
119, pp. 403—413.  
(18) Huang, Y., Change, C. and Trosko, J. E. (1983), Aphidicolin- 
induced endoreduplication in Chinese hamster cells,  Cancer 
Res.,  43, pp. 1362—1364  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 318
 
Б.11. МУТАГЕННОСТ  — ТЕСТ  IN VIVO  ЗА ХРОМОЗОМНИ  
АБЕРАЦИИ  В КОСТНИЯ  МОЗЪК  НА БОЗАЙНИЦИ  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е изцяло  подобен  на теста  за хромозомни  
аберации  в костния  мозък  на бозайници  на OECD TG 475 от 
1997 г. 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Тестът  in vivo  в микроядрата  на клетки  от бозайници  се използва  
за откриване  на структурни  хромозомни  аберации , индуцирани  
от тествано  вещество  в клетки  от костен  мозък  на животни , 
обикновено  гризачи  (1) (2) (3) (4). Структурните  хромозомни  
аберации  могат  да бъдат  два вида : хромозомни  или хроматидни . 
Едно  увеличение  в полиплоидията  би могло  да показва , че 
дадено  химично  вещество  има потенциал  да предизвиква  
геномни  аберации . С повечето  химични  мутагени  се 
предизвикват  аберации  от хроматиден  тип, но хромозомният  
тип аберации  също  се срещат . Хромозомните  аберации  и 
свързаните  с тях събития  са причината  за генетични  болести  у 
човека , а има реални  доказателства , че хромозомните  мутации  и 
свързаните  с тях събития , причиняващи  промени  в онкогените  и 
тумороподтискащите  гени , участват  в причиняването  на рак на 
хора  и експериментални  системи . 
В настоящия  тест обикновено  се използват  гризачи . Обект  на 
настоящия  тест е тъканта  на костният  мозък , тъй като 
последният  представлява  високо  васкуларизирана  тъкан  и 
съдържа  популация  от бързо  циклиращи  клетки , които  могат  
лесно  да се изолират  и обработят . Други  видове  и тъкани  не 
са обекти  на настоящия  метод . 
Настоящият  тест за хромозомни  аберации  е от специално  
значение  за оценка  на мутагенната  опасност , поради  това че 
позволява  разглеждане  на фактори  на in vivo  метаболизма , 
фармакокинетиката  и процесите  на ДНК  репарация , въпреки  
че те варират  при различните  видове  и тъкани . Тест  in vivo  е 
също  полезен  за по-нататъшното  изследване  на мутагенния  
ефект , установен  чрез тест in vitro.  
Ако има доказателства , че тестваното  вещество  или реактивен  
метаболит  няма  да достигнат  до тъканта , която  е обект  на 
изследване , не е подходящо  да се използва  в настоящия  тест. 
Вижте  също  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Хроматиден  тип аберация : структурно  увреждане  на хромо­  
зомата , изразяващо  се в разкъсване  на единични  хроматиди  
или разкъсване  и повторно  съединяване  между  хроматиди . 
Хромозомен  тип аберация : структурно  увреждане  на хромо­  
зомата , изразяващо  се в разкъсване  или разкъсване  и повторно  
съединяване  на двата  хроматида  на същата  страна . 
Ендоредупликация : процес , при който  след  период  S на ДНК  
репликация  ядрото  не навлиза  в митоза , а започва  друг  S 
период . Резултатът  е хромозоми  с 4, 8, 16, ... хроматиди . 
Празнина : ахроматично  увреждане , по-малко  от ширината  на 
един  хроматид  с минимална  несъосност  на хроматида (ите). 
Геномна  аберация : промяна  в броя  на хромозомите  в 
сравнение  с нормалния  брой , характерен  за използваните  клетки . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 319
 
Полиплоидия : кратно  число  на хаплоидния  брой  хромозоми  (n), 
различно  от диплоидния  брой  (т.е. 3n, 4n и т.н.). 
Структурна  аберация : промяна  в хромозомната  структура , 
която  се открива  чрез микроскопско  изследване  на етапа  на 
метафаза  на клетъчното  деление , наблюдавана  във вид на 
заличавания  и фрагменти , вътрешнохромозомни  или 
междухромозомни  изменения . 
1.3 ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
Животни  се излагат  на тестваното  вещество  по подходящ  начин  
и се убиват  в подходящи  моменти  след  обработването . Преди  
убиването  животните  се третират  с блокиращ  метафазата  агент  
(напр . колхицин  или Колцемид ®). След  това се приготвя  
хромозомен  препарат  от клетки  на костния  мозък , оцветява  се 
и клетките  в метафаза  се анализират  за хромозомни  аберации . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
1.4.1.  Подготовка  
1.4.1.1.  Подбор  на животински  вид 
Обичайно  използваните  животни  са плъхове , мишки  и китайски  
хамстери , въпреки  че всеки  подходящ  вид бозайник  би могъл  да 
се използва . Следва  да се вземат  общо  използваните  
лабораторни  щамове  на млади , здрави , пораснали  животни . В 
началото  на изследването  вариациите  в теглото  на животните  
следва  да са минимални  и да не превишават  ± 20 % от 
средното  тегло  на всеки  пол. 
1.4.1.2.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Прилагат  се общите  условия  в Общото  въведение  към част Б, 
въпреки  че следва  да се цели  влажността  на въздуха  да е 
50—60 %.  
1.4.1.3.  Подготовка  на животните  
Здрави , млади , пораснали  животни  се определят  произволно  за 
контролните  и опитните  групи . Клетките  следва  да се подредят  
така, че да се намалят  до минимум  евентуалните  ефекти  от 
разполагането  им. На животните  се дава уникална  идент­  
ифакация . Животните  се аклиматизират  към лабораторните  
условия  поне  пет дни. 
1.4.1.4.  Приготвяне  на дози  
Твърдите  вещества  за теста  следва  да се разтворят  или 
суспендират  в подходящи  разтворители  или носители  и, при 
необходимост , да се разредят  преди  даване  на дозата  на 
животните . Течните  вещества  за теста  могат  да се дават  
директно  или да се разредят  преди  дозиране . Следва  да се 
използват  пресни  препарати  на тестваното  вещество , освен  ако 
данните  за устойчивостта  му не показват , че може  да се 
съхранява . 
1.4.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.4.2.1.  Разтворител /носител  
Разтворителят /носителят  не следва  да предизвиква  токсично  
въздействие  с използваните  нива  на дозиране , а също  така не 
следва  да има съмнения  за химическа  реакция  между  него  и 
тестваното  вещество . Ако се използват  други  освен  добре  
познатите  разтворители /носители , включването  им в теста  
следва  да се подкрепи  от данни  за съвместимостта  им. Препоръчва  
се, винаги  когато  е възможно , първо  да се разглежда  възможността  
за прилагането  на воден  разтворител /носител . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 320
 
1.4.2.2.  Контроли  
Във всеки  тест следва  да се включват  паралелни  положителни  и 
отрицателни  (разтворител /носител ) контроли  за всеки  пол. Като  
се изключи  третирането  с тестваното  вещество , животните  в 
контролните  групи  следва  да се третират  по един  и същи  
начин , както  животните  от опитните  групи . 
Положителните  контроли  следва  да произвеждат  структурни  
аберации  in vivo  при нива  на експозиция , при които  се очаква  
да се постигне  забележимо  увеличение  спрямо  дадения  фон. 
Положителните  контролни  дози  следва  да са така избрани , че 
ефектите  да са ясни , но да не разкриват  непосредствено  на 
четеца  идентичността  на кодираните  предметни  стъкла . 
Приемливо  е положителните  контроли  да се прилагат  по 
различен  начин  от тестваното  вещество  и да им се взема  
проба  само  еднократно . За положителна  контрола  може  да се 
разглежда  използването  на химикали , принадлежащи  към 
химичен  клас, когато  такива  са налични . Примерите  за полож­  
ителни  контролни  вещества  включват : 
Вещество  САS № ЕINECS № 
Етил  метасулфонат  62-50-0 200-536-7 
Етил  нитрозокарбамид  759-73-9 212-072-2 
Митомицин  С 50-07-7 200-008-6 
Циклофосфамид  
Циклофосфамид  монохидрат  50-18-0 
6055-19-2 200-015-4 
Триетиленмеламин  51-18-3 200-083-5  
За всяко  вземане  на проби  следва  да се включват  отрицателните  
контроли , третирани  само  с разтворител  или носител , а за 
всичко  останало  третирани  както  опитните  групи , освен  ако 
няма  приемлива  изменчивост  между  животните  и честотите  на 
клетки  с хромозомни  аберации  са доказани  с контролни  данни  
от предшестващи  изследвания . Ако за отрицателни  контроли  се 
прилага  еднократно  вземане  на проби , най-подходящият  момент  
е първото  вземане  на проба . Освен  това следва  също  да се 
използват  нетретирани  контроли , освен  ако няма  данни  от 
предшестващи  изследвания  или публикувани  контролни  данни , 
показващи , че няма  никакви  вредни  или мутагенни  ефекти , 
предизвикани  от избрания  разтворител /носител . 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1.  Брой  и пол на животните  
Всяка  група  от животни , с които  се извършват  опити , и всяка  
контролна  група  включват  поне  пет животни  за анализ  от един  и 
същ пол. Ако по времето  на изследването  има налични  данни  от 
изследвания  на същия  вид и по същия  начин  на експозиция , 
които  показват , че няма  значителни  разлики  между  половете  
по отношение  на токсичността , то тестването  на един  пол ще 
бъде  достатъчно . Когато  експозицията  на хора  спрямо  
химически  вещества  може  да е в специфична  зависимост  от 
пола , като например  към някои  фармацевтични  агенти , тестът  
следва  да се проведе  с животни  от подходящия  пол. 
1.5.2.  График  на обработване  
За предпочитане  е тестваните  вещества  да се въвеждат  чрез 
еднократно  третиране . Тестваните  вещества  могат  също  да се 
въвеждат  като доза на отделни  части , т.е. две обработвания  в 
един  и същи  ден, разделени  от не повече  от няколко  часа, за да 
се улесни  прилагането  на голям  обем  материал . Други  режими  
на дозиране  следва  да са научно  обосновани . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 321
 
Пробите  следва  да се вземат  в два отделни  момента  след  
третирането  в един  ден. За гризачи  първият  интервал  на 
вземане  на проба  е 1,5 пъти  от продължителността  на 
нормалния  клетъчен  цикъл  (който  нормално  е 12—18 часа) 
след  третирането . Тъй като времето  за поемането  и метаболизма  
на тестваното  вещество , както  и за ефекта  му върху  кинетиката  
на клетъчния  цикъл  може  да повлияе  на оптималното  време  за 
откриване  на хромозомни  аберации , препоръчва  се и вземане  на 
по-късна  проба  24 часа след  първата  проба . Ако се използват  
режими  на дози  за повече  от един  ден, следва  да се взема  една  
проба  1,5 пъти  продължителността  на нормалните  клетъчни  
цикли  след  последното  третиране . 
Преди  убиването  животните  се инжектират  интраперитонеално  с 
подходяща  доза на блокиращ  метафазата  агент  (напр . 
Колцемид ® или колхицин ). След  това, след  подходящ  
интервал  от време  от животните  се взема  проба . За мишки  
този интервал  е приблизително  3—5 часа; за китайски  
хамстери  — около  4—5 часа. Клетките  се събират  от костния  
мозък  и се анализират  за хромозомни  аберации . 
1.5.3.  Нива  на дозиране  
Ако се извършва  изследване  за обхват , поради  това че няма  
подходящи  данни  в наличност , то следва  да е в същата  
лаборатория , като се използва  същият  вид, щам, пол и режим  
на третиране  както  в главното  изследване  (5). Ако има токс­  
ичност , за първото  вземане  на проба  се използват  три нива  на 
дозиране . Тези  нива  на дозиране  следва  да включват  обхват  от 
максимална  до слаба  токсичност  или липса  на токсичност . При 
вземане  на проба  на по-късен  етап следва  да се прилага  само  
най-високата  доза. Най-високата  доза се дефинира  като доза, 
създаваща  признаци  на такава  токсичност , че от по-високи  
нива  на дозиране , базирани  на същия  режим , би могло  да се 
очаква  да доведат  до леталност . Вещества  със специфични  
биологични  активности  при ниски , нетоксични  дози  (като 
хормони  и митогени ) могат  да бъдат  изключения  от критериите  
за определяне  на дозата  и следва  да се оценяват  за всеки  
конкретен  случай . Най-високата  доза може  също  да се 
дефинира  като доза, която  показва  известни  признаци  на токс­  
ичност  в костния  мозък  (напр . намаляване  на митотичния  
индекс  с повече  от 50 %).  
1.5.4.  Граничен  тест 
Ако тест с едно  ниво  на дозиране  от минимум  2 000 mg/kg 
телесно  тегло  при еднократно  третиране  или две третирания  в 
един  и същи  ден не дава забележими  токсични  ефекти , а не би 
могло  да се очаква  генотоксичност  на базата  на данни  от 
структурно  свързани  вещества , то тогава  пълно  изследване  с 
три нива  на дозиране  може  да не се смята  за необходимо . За 
по-дълготрайни  изследвания  граничната  доза е 2 000 mg/kg/ ­ 
телесно  тегло  на ден за период  на третиране  до 14 дни и 
1 000 mg/kg/ телесно  тегло  на ден за период  на третиране , по- 
дълъг  от 14 дни. Очакваната  експозиция  при хора  може  да 
покаже  необходимост  в граничния  тест да се използва  по- 
високо  ниво  на дозиране . 
1.5.5.  Администриране  на дозите  
Тестваното  вещество  обикновено  се дава със стомашна  сонда , 
като се използва  тръба  или подходяща  интубационна  канюла , 
или чрез интраперитонеална  инжекция . Други  начини  на 
експозиция  биха  били  приемливи , ако могат  да се обосноват . 
Максималният  обем  течност , който  може  да се вкара  еднократно  
със стомашна  сонда  или инжекция , зависи  от големината  на 
опитното  животно . Обемът  не следва  да превишава  2m1/100g 
телесно  тегло . Обеми , по-високи  от тези, следва  да се обосноват . 
С изключение  на дразнещи  или корозивни  вещества , които  
нормално  дават  изострящи  ефекти  при по-високи  концентрации , 
варируемостта  на тестовия  обем  следва  да се сведе  до минимум  
чрез регулиране  на концентрацията  с цел осигуряване  на 
постоянен  обем  на всички  нива  на дозиране . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 322
 
1.5.6.  Подготовка  на хромозомит e 
Непосредствено  след  убиването  на животните  костният  мозък  се 
извлича , експонира  се в хипотоничен  разтвор  и се фиксира . 
След  това клетките  се разнасят  върху  предметни  стъкла  и се 
оцветяват . 
1.5.7.  Анализ  
Митотичният  индекс  следва  да се определи  като мярка  на 
цитотоксичност  в най-малко  1 000 клетки  на едно  животно  за 
всички  опитни  животни  (включително  и положителните  
контроли ) и животни , които  не са подлагани  на опити , с отриц­  
ателни  контроли . 
За всяко  животно  следва  да се анализират  най-малко  100 клетки . 
Този  брой  би могъл  да се намали , когато  се наблюдава  висок  
брой  аберации . Всички  предметни  стъкла , включително  и тези 
на положителните  и отрицателните  контроли , следва  да се 
кодират  поотделно  преди  анализа  под микроскоп . Тъй като 
процедурите  по подготовка  на предметно  стъкло  често  водят  
до разкъсване  на част от метафазите  със загуба  на хромозоми , 
отчетените  клетки  следва  да съдържат  известен  брой  
центромери , равни  на броя  2n ± 2.  
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Данните  за всяко  от животните  следва  да се представят  в 
таблица . Експерименталната  единица  е животното . За всяко  
изследвано  животно  отделно  се оценяват  броят  на отчетените  
клетки , броят  на аберации  на клетка  и процентът  на клетки  
със структурна (и) хромозомна (и) аберация (и). Следва  да се 
показват  различните  типове  структурни  хромозомни  аберации  
с броя  и честотота  им за групите , при които  се извършват  
опити , и за контролните  групи . Празнини  се регистрират  
отделно  и се докладват , но принципно  не се включват  в 
общата  честота  на аберациите . Ако няма  факти  за разлика  в 
реакцията  между  половете , данните  от двата  пола  могат  да се 
комбинират  за статистическия  анализ . 
2.2. ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , 
като например  свързано  с дозата  увеличение  в относителния  
брой  на клетки  с хромозомни  аберации , или явно  увеличение  
в броя  на клетки  с аберации  в групата  с еднократна  доза и 
еднократно  вземане  на проба . Първо  следва  да се вземе  
предвид  биологичната  значимост  на резултатите . Статистически  
методи  може  да се използват  като помощно  средство  за 
оценката  на резултатите  от теста  (6). Статистическата  
значимост  не следва  да е единственият  решаващ  фактор  за 
положителна  реакция . Двузначните  резултати  следва  да се 
изяснят  чрез още тестове , като за предпочитане  е да се 
изменят  условията  на експеримента . 
Увеличение  в полоплоидията  може  да е показателно  за това, че 
тестваното  вещество  има потенциала  да индуцира  геномни  
хромозомни  аберации . Увеличение  в ендоредупликацията  може  
да показва , че тестваното  вещество  е в състояние  да инхибира  
прогресията  на клетъчния  цикъл  (7) (8).  
Тествано  вещество , за което  резултатите  не отговарят  на горните  
критерии , се смята  за немутагенно  при настоящия  тест. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 323
 
Въпреки  че повечето  опити  дават  ясно  положителни  или отриц­  
ателни  резултати , в редки  случаи  наборът  данни  изключва  
възможността  да се направи  категорична  преценка  за актив­  
ността  на тестваното  вещество . Резултатите  могат  да останат  
неясни  или под въпрос , независимо  от това колко  пъти  е 
извършен  опитът . 
Положителните  резултати  от теста  in vivo  за хромозомни  
аберации  показват , че тестваното  вещество  предизвиква  
структурни  хромозомни  аберации  в костния  мозък  на 
тествания  вид. Отрицателните  резултати  показват , че при 
условията  за провеждане  на теста  тестваното  вещество  не 
предизвиква  хромозомни  аберации  в костния  мозък  на 
тествания  вид. 
Следва  да се обсъди  вероятността  тестваното  вещество  или 
метаболитите  му да достигнат  общото  кръвообращение  или по- 
конкретно  тъканта , която  е обект  на тестването  (напр . системна  
токсичност ). 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
3.1. ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  следва  да включва  следната  информация : 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на носител , 
— разтворимост  и стабилност  на тестваното  вещество  в 
разтворител /носител , ако са известни . 
Опитни  животни : 
— вид/щам, 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— източник , условия  на отглеждане , начин  на хранене  и др., 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на теста , в т.ч. 
обхват  на телесното  тегло , средни  стойности  и стандартно  
отклонение  за всяка  група . 
Условия  за провеждане  на теста : 
— положителни  и отрицателни  (носител /разтворител ) 
контролни  данни , 
— данни  от изследването  за установяване  на обхват , ако е 
проведено , 
— основна  причина  за избора  на нивото  на дозата , 
— подробности  за приготвянето  на тестваното  вещество , 
— подробности  за администрирането  на тестваното  вещество , 
— основна  причина  за начина  на администриране , 
— методи  за проверка  на достигането  на тестваното  вещество  
до общото  кръвообращение  или тъкан , която  е обект  на 
тестването , ако са приложими , 
— преминаване  от концентрация  (ррm) на тестваното  вещество  
в храната /питейната  вода  към действителната  доза (mg/kg 
телесно  тегло ), ако е приложимо , 
— подробности  за качеството  на храната  и водата , 
— подробно  описание  на графиците  на третиране  и вземане  на 
проби , 
— методи  на измерване  на токсичността , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 324
 
— идентичност  на блокиращото  метафазата  вещество , конце­  
нтрация  и времетраене  на третирането , 
— методи  на приготвяне  на предметно  стъкло , 
— критерии  за отчитане  на аберации , 
— брой  на анализирани  клетки /животно , 
— критерии  за определяне  на изследванията  като положителни , 
отрицателни  или двузначни . 
Резултати : 
— признаци  на токсичност , 
— митотичен  индекс , 
— тип и брой  на аберациите , дадени  отделно  за всяко  животно , 
— общ брой  на аберациите  на група  със средни  стойности  и 
стандартни  отклонения , 
— брой  клетки  с аберации  на група  със средни  стойности  и 
стандартни  отклонения , 
— изменения  в полиплоидията , ако се наблюдават , 
— взаимоотношение  доза/реакция , където  е възможно , 
— статистически  анализи , ако има такива , 
— паралелни  отрицателни  контролни  данни , 
— исторически  отрицателни  данни  от предишни  изследвания  с 
обхвати , средни  стойности  и стандартни  отклонения , 
— паралелни  положителни  контролни  данни . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Adler, I. D. (1984), Cytogenetic Tests in Mammals, w:  Muta­
genicity Testing: a Practical Approach,  S. Venitt and J. M. 
Parry (eds), IRL Press, Oxford, Washington D.C., pp. 275—306.
 
(2) Preston, R. J., Dean, B. J., Galloway, S., Holden, H., McFee, A. 
F. and Shelby, M. (1987), Mammalian  In vivo  Cytogenetic 
AssayS: Analysis of Chromosome Aberrations in Bone Marrow Cells,  Mutation Res.,  189, pp. 157—165.
 
(3) Richold, M., Chandley, A., Ashby, J., Gatehouse, D. G., 
Bootman, J. and Henderson, L. (1990),  In vivo  Cytogenetic 
Assays, w: D. J. Kirkland (ed.),  Basic Mutagenicity Tests, 
UKEMS Recommended Procedures. UKEMS Sub-Committee 
on Guidelines for Mutagenicity Testing. Report, Part I revised,  Cambridge University Press, Cambridge, New York, 
Port Chester, Melbourne, Sydney, pp. 115—141.
 
(4) Tice, R. R., Hayashi, M., MacGregaro, J. T., Anderson, D., 
Blakey, D. H., Holden, H. E., Kirsch-Volders, M., Oleson Jr., 
F. B., Pacchierotti, F., Preston, R. J., Romagna, F., Shimada, H., Sutou, S. and Vannier, B. (1994), Report from the Working Group on the  in Vivo  Mammalian Bone Marrow Chromosomal 
Aberration Test,  Mutation Res.,  312, pp. 305—312.
 
(5) Fielder, R. J., Allen, J. A., Boobis, A. R., Botham, P. A., Doe, 
J., Esdaile, D. J., Gatehouse, D. G., Hodson-Walker, G., Morton, D. B., Kirkland, D. J. and Richold, M. (1992), Report of British Toxicology Society/UK Environmental 
Mutagen Society Working Group: Dose setting in  In Vivo  Muta­
genicity Assays,  Mutagenesis,  7, pp. 313—319.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 325
 
(6) Lovell, D. P., Anderson, D., Albanese, R., Amphlett, G. E., 
Clare, G., Ferguson, R., Richold, M., Papworth, D. G. and 
Savage, J. R. K. (1989), Statistical Analysis of  In Vivo  Cyto­
genetic Assays, w:  UKEMS Sub-Committee on Guidelines for 
Mutagenicity Testing, Report Part III. Statistical Evaluation of 
Mutagenicity Test Data,  D. J. Kirkland (ed.) Cambridge 
University Press, Cambridge, pp. 184—232.  
(7) Locke-Huhle, C. (1983), Endoreduplication in Chinese hamster 
cells during alpha-radiation-induced G2 arrest,  Mutation Res.,  
119, pp. 403—413.  
(8) Huang, Y., Change, C. and Trosko, J. E. (1983), Aphidicolin- 
induced endoreduplication in Chinese hamster cells,  Cancer 
Res.,  43, pp. 1362—1364.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 326
 
Б.12. МУТАГЕННОСТ  — IN VIVO  МИКРОЯДРЕН  ТЕСТ  НА 
ЕРИТРОЦИТИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е изцяло  подобен  на микроядрен  тест на 
еритроцити  от бозайници  на OECD TG 474 от 1997 г. 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Микроядрен  тест in vivo  на еритроцити  от бозайници  се 
използва  за откриване  на увреждания , предизвиквани  от 
тестваното  вещество , на хромозомите  или митотичния  апарат  
на еритробласти  чрез анализ  на еритроцити , така както  са 
взети  като проби  от клетки  в костния  мозък  и/или периферната  
кръв  на животни , обичайно  гризачи . 
Целта  на микроядрения  тест е да се идентифицират  вещества , 
причиняващи  цитогенно  увреждане , което  води  до образуването  
на микроядра , съдържащи  изоставащи  хромозомни  фрагменти  
или цели  хромозоми . 
Когато  еритробласт  на костен  мозък  се развие  в полихроматичен  
еритроцит , главното  ядро  се екструдира , а всяко  образувано  вече 
микроядро  може  да изостане  в иначе  обезядрената  цитоплазма . 
Онагледяването  на микроядрата  се улеснява  в тези клетки , тъй 
като на тях им липсва  главното  ядро . Увеличаването  на 
честотата  на полихроматични  еритроцити  с микроядра  в 
третираните  животни  е показател  за индуцирано  хромозомно  
увреждане . 
В настоящия  тест обикновено  се използва  костният  мозък  на 
гризачи , тъй като в тази тъкан  се произвеждат  полихроматични  
еритроцити . Измерването  на незрели  (полихроматични ) 
еритроцити  с микроядра  в периферна  кръв  е еднакво  
приемливо  във всеки  вид, при който  неспособността  на далака  
да отстранява  еритроцити  с микроядра  е изявена  или който  е 
показал  адекватна  чувствителност  да открива  агенти , 
причиняващи  структурни  или геномни  хромозомни  аберации . 
Микроядрата  могат  да бъдат  разграничени  чрез редица  
критерии . Те включват  идентификация  на наличието  или 
отсъствието  на кинетохорна  или центромерна  ДНК  в 
микроядрата . Честотата  на незрели  (полихроматични ) 
еритроцити  с микроядра  е главнита  крайна  точка . Броят  на 
зрели  (нормохроматични ) еритроцити  в периферната  кръв , 
съдържащи  микроядра  измежду  даден  брой  зрели  еритроцити , 
може  също  да се използва  като крайна  точка  за анализа  на 
опита , когато  животните  се третират  в продължение  на четири  
или повече  седмици . 
Настоящият  микроядрен  тест in vivo  на еритроцити  от 
бозайници  е особено  важен  за оценка  на мутагенната  
опасност , поради  това че дава възможност  за разглеждане  на 
фактори  на процесите  in vivo  на метаболизма , фармакокин­  
етиката  и възстановителните  процеси  в ДНК , въпреки  че те 
могат  да варират  според  вида , тъканта  и генетичните  крайни  
точки . Анализ  чрез тест in vivo  е полезен  и за по-нататъшното  
изследване  на мутагенния  ефект , установен  чрез система  in vitro.  
Ако има доказателства , че тестваното  вещество  или реактивен  
метаболит  няма  да достигнат  до тъкан , която  е обект  на анализ , 
не е подходящо  да се използва  настоящият  тест. 
Вижте  също  Общо  въведение , част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 327
 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Центромера  (Кинетохора ): област (и) на хромозомата , с 
която (които ) вретеновидни  фибри  се свързват  по време  на 
клетъчното  деление , като така позволяват  методично  
придвижване  на дъщерните  хромозоми  към полюсите  на 
дъщерните  клетки . 
Микроядра : малки  ядра , отделни  от главното  ядро  и в 
допълнение  към него , на клетките , произведени  по време  на 
телофазата  на митоза  (мейоза ) чрез изоставащи  хромозомни  
фрагменти  или цели  хромозоми . 
Нормохроматичен  еритроцит : зрял еритроцит , на който  му 
липсват  рибозоми  и може  да бъде  отличен  от незрели , 
полихроматични  еритроцити  чрез оцветявания , селективни  за 
рибозоми . 
Полихроматичен  еритроцит : незрял  еритроцит  в междинен  
етап на развитие , който  все още съдържа  рибозоми  и следов­  
ателно  може  да бъде  отличен  от зрели  нормохроматични  
еритроцити  чрез оцветявания , селективни  за рибозоми . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
Животните  се експонират  на въздействието  на тестваното  
вещество  по подходящ  начин . Ако се използва  костен  мозък , 
животните  се убиват  в подходящи  моменти  след  третирането , 
костният  мозък  се извлича , а препаратите  се изготвят  и 
оцветяват  (1) (2) (3) (4) (5) (6) (7). Когато  се използва  
периферна  кръв , кръвта  се взема  в подходящи  моменти  след  
третирането , а препаратите  за намазка  се изготвят  и оцветяват  
(4) (8) (9) (10). За опити  с периферна  кръв  следва  да мине  
възможно  най-малко  време  между  експозицията  и обирането  
на реколтата  от клетки . Препаратите  се анализират  за наличие  
на микроядра . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
1.4.1.  Подготовка  
1.4.1.1.  Подбор  на животинския  вид 
Ако се използва  костен  мозък , препоръчват  се мишки  или 
плъхове , въпреки  че всеки  подходящ  вид от бозайници  би 
могъл  да се използва . Когато  се използва  периферна  кръв , 
препоръчват  се мишки . Все пак всеки  подходящ  вид от 
бозайници  би могъл  да се използва , при условие  че това е 
вид, в който  далакът  не отстранява  еритроцити  с микроядра , 
или вид, показал  адекватна  чувствителност  за откриване  на 
агенти , които  причиняват  структурни  или геномни  хромозомни  
аберации . За теста  следва  да се вземат  общо  използваните  
лабораторни  щамове  на млади , здрави  животни . В началото  на 
изследването  вариациите  в теглото  на животните  следва  да са 
минимални  и да не превишават  ± 20 % от средното  тегло  на 
всеки  пол. 
1.4.1.2.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Прилагат  се общите  условия  в Общото  въведение  към част Б, 
въпреки  че целта  е влажността  на въздуха  да е 50—60 %.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 328
 
1.4.1.3.  Подготовка  на животните  
Здрави  млади  животни  се отделят  на произволен  принцип  за 
контролните  и опитните  групи . На животните  се дава 
уникална  идентифакация . Животните  са аклиматизират  към 
лабораторните  условия  поне  пет дни. Клетките  следва  да се 
подредят  така, че да се намалят  до минимум  евентуалните  
ефекти  от разполагането  им. 
1.4.1.4.  Приготвяне  на дози  
Твърдите  вещества  за теста  следва  да се разтворят  или 
суспендират  в подходящи  разтворители  или носители  и, при 
необходимост , да се разредят  преди  даване  на дозата  на 
животните . Течните  вещества  за теста  могат  да се дозират  
директно  или да се разредят  преди  дозиране . Следва  да се 
използват  пресни  препарати  на тестваното  вещество , освен  ако 
данните  за устойчивостта  му не показват , че може  да се 
съхранява . 
1.4.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.4.2.1.  Разтворител /носител  
Разтворителят /носителят  не следва  да има токсично  въздействие  
при използваните  нива  на дозиране , а също  така не следва  да 
предизвиква  съмнения  за химическа  реакция  между  него  и 
тестваното  вещество . Ако се използват  други  освен  добре  
познатите  разтворители /носители , включването  им в теста  
следва  да се подкрепи  от данни  за съвместимостта  им. 
Препоръчва  се, винаги  когато  е възможно , първо  да се 
разглежда  възможността  за прилагането  на воден  разтворител /­ 
носител . 
1.4.2.2.  Контроли  
Във всеки  тест следва  да се включват  паралелни  положителни  и 
отрицателни  (разтворител /носител ) контроли  за всеки  пол. Като  
се изключи  третирането  с тестваното  вещество , с животните  в 
контролните  групи  следва  да се борави  по един  и същи  начин  
както  с животните  от групите , с които  се извършват  опити . 
Положителните  контроли  следва  да произвеждат  микроядра  in 
vivo при нива  на експозиция , при които  се очаква  да се постигне  
забележимо  увеличение  спрямо  съответния  фон. Положителните  
контролни  дози  следва  да са така избрани , че ефектите  да са 
ясни , но да не разкриват  непосредствено  на четеца  идент­  
ичността  на кодираните  предметни  стъкла . Приемливо  е полож­  
ителните  контроли  да се администрират  по различен  начин  от 
тестваното  вещество  и да им се взема  проба  само  еднократно . 
Освен  това за положителна  контрола  следва  да се смята  
използването  на химикали , принадлежащи  към химичен  клас, 
когато  такива  са налични . Примерите  за положителни  
контролни  вещества  включват : 
Вещество  САS № ЕINECS № 
Етил  метансулфонат  62-50-0 200-536-7 
N- етил  -N-нитрозокарбамид  759-73-9 212-072-2 
Митомицин  С 50-07-7 200-008-6 
Циклофосфамид  50-18-0 200-015-4 
Циклофосфамид  монохидрат  6055-19-2 
Триетиленмеламин  51-18-3 200-083-5  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 329
 
За всяко  вземане  на проби  следва  да се включват  отрицателните  
контроли , третирани  само  с разтворител  или носител , а за 
всичко  останало  третирани  както  опитните  групи , освен  ако 
няма  приемлива  изменчивост  между  животните  и честотите  на 
клетки  с микроядра  са доказани  с контролни  данни  от предишни  
изследвания . Ако за отрицателни  контроли  се прилага  
еднократно  вземане  на проби , най-подходящият  момент  е 
първият . Освен  това следва  също  да се използват  необработени  
контроли , освен  ако няма  контролни  данни  от предишни  
изследвания  или публикувани  контролни  данни , които  
показват , че няма  никакви  вредни  или мутагенни  ефекти , 
предизвикани  от избрания  разтворител /носител . 
Ако се използва  периферна  кръв , проба  преди  третирането  може  
да е приемлива  в качеството  на паралелна  отрицателна  
контрола , но само  при кратките  изследвания  на периферна  
кръв  (напр . 1—3 третирания ), когато  резултантните  данни  са в 
очаквания  обхват  за контрола  от предишни  изследвания . 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1.  Брой  и пол на животните  
Всяка  група  за опити  и всяка  контролна  група  следва  да 
включват  поне  пет анализируеми  животни  от един  пол (11). 
Ако по времето  на изследването  има налични  данни  от 
изследвания  на същия  вид и чрез същия  начин  на експозиция , 
които  показват , че няма  значителни  разлики  между  половете  по 
отношение  на токсичността , то тестването  на един  пол ще бъде  
достатъчно . Когато  експозицията  на хора  спрямо  химически  
вещества  може  да е в специфична  зависимост  от пола , като 
например  с някои  фармацевтични  агенти , тестът  следва  да се 
проведе  с животни  от подходящия  пол. 
1.5.2.  График  на обработване  
Не може  да се препоръча  стандартен  график  на обработване  (т.е. 
едно , две или повече  третирания  на 24-часови  интервали ). 
Пробите  от обширни  режими  на дози  са приемливи , доколкото  
е демонстриран  положителен  ефект  за настоящото  изследване , 
или за изследване  с отрицателен  ефект , доколкото  е демо­  
нстрирана  токсичността  или е използвана  граничната  доза и 
дозирането  е продължило  до времето  на вземане  на проба . 
Тестваните  вещества  могат  също  да се администрират  като 
разделена  доза, т.е. две третирания  в един  и същи  ден, 
разделени  от не повече  от няколко  часа, за да се улесни  
даването  на голям  обем  материал . 
Тестът  може  да се извърши  по два начина : 
а) животните  се третират  веднъж  с тестваното  вещество . Проби  
от костен  мозък  се вземат  най-малко  два пъти , като се 
започне  не по-рано  от 24 часа след  третирането , но не 
повече  от 48 часа след  третирането , на подходящи  
интервали  между  пробите . Вземането  на проби  по-рано  от 
24 часа след  третирането  следва  да бъде  обосновано . Проби  
от периферна  кръв  се вземат  най-малко  два пъти , като се 
започне  не по-рано  от 36 часа след  третирането , на 
подходящи  интервали  след  първото , но не повече  от 72 
часа. Когато  се разпознае  положителна  реакция  след  едно  
вземане  на проба , не се изисква  допълнително  вземане  на 
проба ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 330
 
б) ако се прилагат  две или повече  обработвания  на ден (напр . 
две или повече  третирания  на 24-часови  интервали ), следва  
да се вземат  проби  веднъж  между  18-ия и 24-ия час след  
последното  третиране  за костния  мозък  и веднъж  между  
36-ия и 48-ия час след  последното  третиране  за периферната  
кръв  (12).  
Когато  е уместно , може  да се използва  друг  график  на вземане  
на проби . 
1.5.3.  Нива  на дозиране  
Ако се извършва  изследване  за обхват , поради  това че няма  в 
наличност  подходящи  данни , то следва  да се извърши  в същата  
лаборатория , като се използва  същият  вид, щам, пол и режим  на 
третиране , който  се използва  и в главното  изследване  (13). Ако 
има токсичност , за първото  вземане  на проба  се използват  три 
нива  на дозиране . Тези  нива  на дозиране  следва  да включват  
обхват  от максимална  до слаба  токсичност  или липса  на токс­  
ичност . При вземане  на проба  на по-късен  етап е необходимо  да 
се прилага  само  най-високата  доза. Най-високата  доза се 
дефинира  като доза, създаваща  признаци  на такава  токсичност , 
че от по-високи  нива  на дозиране , базирани  на същия  режим , би 
могло  да се очаква  да доведат  до леталност . Вещества  със спец­  
ифични  биологични  активности  при ниски , нетоксични  дози  
(като хормони  и митогени ) могат  да бъдат  изключения  по 
отношение  на критериите  за определяне  на дозата  и следва  да 
се оценяват  за всеки  конкретен  случай . Най-високата  доза може  
също  да се дефинира  като доза, която  показва  известни  
признаци  на токсичност  в костния  мозък  (напр . намаляване  на 
съответната  част от незрели  еритроцити  спрямо  общия  брой  
еритроцити  в костния  мозък  или периферната  кръв ). 
1.5.4.  Граничен  тест 
Ако тест с едно  ниво  на дозиране  от минимум  2 000 mg/kg 
телесно  тегло  при еднократно  третиране  или две третирания  в 
един  и същи  ден не дава забележими  токсични  ефекти , а генот­  
оксичност  не би могла  да се очаква  на базата  на данни  от 
структурно  свързани  вещества , то тогава  пълно  изследване  с 
три нива  на дозиране  може  да не се смята  за необходимо . За 
по-дълготрайни  изследвания  граничната  доза е 2 000 mg/kg/ ­ 
телесно  тегло /ден за период  на третиране  до 14 дни и 1 000 
mg/kg/телесно  тегло /ден за период  на третиране , по-дълъг  от 
14 дни. Очакваната  експозиция  към хора  може  да покаже , че е 
необходимо  в граничния  тест да се използва  по-високо  ниво  на 
дозиране . 
1.5.5.  Администриране  на дозите  
Тестваното  вещество  обикновено  се дава със стомашна  сонда , 
като се използва  тръба  или подходяща  интубационна  канюла , 
или чрез интраперитонеална  инжекция . Други  начини  на 
експозиция  биха  били  приемливи , ако могат  да се обосноват . 
Максималният  обем  течност , който  може  да се вкара  еднократно  
със стомашна  сонда  или инжекция , зависи  от големината  на 
опитното  животно . Обемът  не следва  да превишава  2 ml/100g 
телесно  тегло . Използването  на обеми , по-големи  от тези, следва  
да бъде  обосновано . С изключение  на дразнещи  или корозивни  
вещества , които  нормално  дават  изострящи  ефекти  при по- 
високи  концентрации , променливостта  на тестовия  обем  следва  
да се сведе  до минимум  чрез регулиране  на концентрацията  с 
цел осигуряване  на постоянен  обем  на всички  нива  на дозиране . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 331
 
1.5.6.  Подготовка  на костния  мозък /кръвта  
Клетките  на костния  мозък  обичайно  се вземат  от бедрените  
кости  или от тибиите  (големите  пищяли ) непосредствено  след  
убиването  на животното . Според  общоприетата  практика  
клетките  се изваждат  от бедрените  кости  или от тибиите , 
подготвят  се и се оцветяват  по установените  методи . 
Периферната  кръв  се взема  от опашната  вена  или друг  
подходящ  кръвоносен  съд и незабавно  се оцветява  суправитално  
(8) (9) (10), или се приготвят  препарати  за намазка , след  което  се 
оцветяват . Използването  на специфични  оцветители  за ДНК  
(напр . акридин  оранжево  (14) или Хьохст  33258 плюс  
пиронин -Y (15) може  да елиминира  някои  от аретафктите , 
свързани  с използването  на оцветител , което  не е специфично  
за ДНК . Това  предимство  не изключва  използването  на конве­  
нционални  багрила  (напр . Гиемса ). Могат  също  да се използват  
допълнителни  системи  (напр . целулозни  колони  за отстраняване  
на клетки  с ядра  (16), при условие  че е доказано , че тези 
системи  работят  адекватно  в лабораторното  приготвяне  на 
микроядра . 
1.5.7.  Анализ  
Пропорцията  на незрелите  от общо  (незрели  + зрели ) 
еритроцити  се определя  за всяко  животно , като се отброяват  
общо  най-малко  200 еритроцити  за костен  мозък  и 1 000 
еритроцити  за периферна  кръв  (17). Всички  предметни  стъкла , 
включително  и тези за положителни  и отрицателни  контроли , 
следва  да се кодират  поотделно  преди  анализа  под микроскоп . 
Най-малко  2 000 незрели  еритроцити  на животно  се изследват  за 
разпространението  на незрели  еритроцити  с микроядра . Допълн­  
ителна  информация  може  да се получи  чрез изследване  на зрели  
еритроцити  за микроядра . Когато  се анализират  предметни  
стъкла , пропорцията  незрели  от общия  брой  еритроцити  не 
следва  да е по-малко  от 20 % от контролната  стойност . Когато  
животните  се третират  непрекъснато  в течение  на четири  или 
повече  седмици , най-малко  2 000 зрели  еритроцити  на животно  
могат  също  да се изследват  за разпространението  на микроядра . 
Приемливи  алтернативи  на ръчния  анализ  са системите  за 
автоматизиран  анализ  (анализ  на изображението  и поточен  
цитометричен  анализ  на клетъчни  суспензии ), ако са 
подходящо  обосновани  и валидирани . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Индивидуалните  данни  за животните  следва  да се представят  в 
таблица . Експерименталната  единица  е животното . За всяко  
изследвано  животно  следва  да се дават  отделно  броят  на 
отчетените  незрели  еритроцити , броят  на незрелите  еритроцити  
с микроядра  и броят  на незрелите  спрямо  общото  количество  на 
еритроцитите . Когато  животните  се третират  непрекъснато  в 
течение  на четири  или повече  седмици , данни  за зрелите  
еритроцити  следва  също  да се дадат , ако са събрани . 
Пропорцията  на незрелите  спрямо  общия  брой  на еритроцитите  
и, ако се смята  за приложимо , процентът  на еритроцитите  с 
микроядра , се посочва  за всяко  животно . Ако няма  факти  за 
разлика  в реакцията  между  половете , данните  от двата  пола  
могат  да се комбинират  за статистическия  анализ . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 332
 
2.2. ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , 
като свързано  с дозата  увеличение  на броя  клетки  с микроядра  
или явно  увеличение  на броя  клетки  с микроядра  в група  с 
еднократна  доза и еднократно  вземане  на проба . Първо  следва  
да се разгледа  биологичната  значимост  на резултатите . При 
оценката  на резултатите  от теста  като помощно  средство  може  
да се използват  статистически  методи  (18) (19). Статистическата  
значимост  не следва  да е единственият  решаващ  фактор  за 
положителна  реакция . Двузначните  резултати  следва  да се 
изяснят  чрез допълнително  тестване , като за предпочитане  е да 
се изменят  условията  на експеримента . 
Тествано  вещество , за което  резултатите  не отговарят  на горните  
критерии , се смята  за немутагенно  при настоящия  тест. 
Въпреки  че повечето  експерименти  дават  ясно  положителни  или 
отрицателни  резултати , в редки  случаи  наборът  данни  изключва  
възможността  да се направи  категорична  преценка  за актив­  
ността  на тестваното  вещество . Резултатите  могат  да останат  
двузначни  или под въпрос , независимо  от това колко  пъти  е 
повторен  опитът . 
Положителните  резултати  в микронуклеарния  тест показват , че 
веществото  индуцира  микроядра , които  са резултат  от 
хромозомно  увреждане  или увреждане  на митотичния  апарат  в 
еритробластите  на опитния  вид. Отрицателните  резултати  
показват , че при условията  за провеждане  на теста  тестваното  
вещество  не създава  микроядра  в незрелите  еритроцити  на 
тествания  вид. 
Следва  да се обсъди  вероятността  тестваното  вещество  или 
метаболитите  му да достигнат  общото  кръвообращение  или 
конкретно  тъканта , която  е обект  на изследване  (напр . 
системна  токсичност ). 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  следва  да включва  следната  информация : 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на носител , 
— разтворимост  и стабилност  на тестваното  вещество  в 
разтворител /носител , ако са известни . 
Опитни  животни : 
— вид/щам, 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— източник , условия  на отглеждане , начин  на хранене  и др., 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на теста , в т.ч. 
обхват  на телесното  тегло , средни  стойности  и стандартно  
отклонение  за всяка  група . 
Условия  за провеждане  на теста : 
— положителни  и отрицателни  (носител /разтворител ) 
контролни  данни , 
— данни  от изследването  за установяване  на обхват , ако е 
проведено , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 333
 
— основна  причина  за избора  на нивото  на дозата , 
— подробности  за приготвянето  на тестваното  вещество , 
— подробности  за администрирането  на тестваното  вещество , 
— основна  причина  за начина  на администриране , 
— методи  за проверка  на достигането  на тестваното  вещество  
до общото  кръвообращение  или прицелната  тъкан , ако са 
приложими , 
— преминаване  от концентрация  (ррm) на тестваното  вещество  
в храната /питейната  вода  към действителната  доза (mg/kg 
телесно  тегло ), ако е приложимо , 
— подробности  за качеството  на храната  и водата , 
— подробно  описание  на графиците  на третиране  и вземане  на 
проби , 
— методи  на приготвяне  на предметно  стъкло , 
— методи  на измерване  на токсичността , 
— критерии  за отчитане  на незрели  еритроцити , 
— брой  на анализирани  клетки /животно , 
— критерии  за отчитане  на изследванията  като положителни , 
отрицателни  или двузначни . 
Резултати : 
— признаци  на токсичност , 
— пропорция  на незрелите  еритроцити  от общия  брой  
еритроцити , 
— брой  на незрелите  еритроцити  с микроядра , посочен  отделно  
за всяко  животно , 
— средна  стойност  ± стандартно  отклонение  на незрелите  
еритроцити  с микроядра  на група , 
— взаимоотношение  доза/реакция , където  е възможно , 
— статистически  анализи , ако има такива , 
— паралелни  отрицателни  данни  и отрицателни  данни  от 
предишни  изследвания , 
— паралелни  положителни  контролни  данни . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Heddle, J. A. (1973), A Rapid In Vivo Test for Chromosomal 
Damage,  Mutation Res.,  18, pp. 187—190.  
(2) Schmid, W. (1975), The Micronucleus Test,  Mutation Res.,  31, 
pp. 9—15.  
(3) Heddle, J. A., Salamone, M. F., Hite, M., Kirkhart, B., Mavo ­
urnin, K., MacGregor, J. G. and Newell, G. W. (1983), The Induction of Micronuclei as a Measure of Genotoxicity,  
Mutation Res.  123,pp. 61—118.
 
(4) Mavournin, K. H., Blakey, D. H., Cimino, M. C, Salamone, 
M. F. and Heddle, J. A. (1990), The In Vivo Micronucleus Assay in Mammalian Bone Marrow and Peripheral Blood. A 
report of the U.S. Environmental Protection Agency Gene-Tox 
Program,  Mutation Res.,  239, pp. 29—80.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 334
 
(5) MacGregor, J. T., Schlegel, R., Choy, W. N. and Wehr, C. M. 
(1983), Micronuclei in Circulating ErythrocyteS: A Rapid 
Screen for Chromosomal Damage During Routine Toxicity Testing in Mice, w:  Developments in Science and Practice of 
Toxicology,  ed. A. W. Hayes, R. C. Schnell and T. S. Miya. 
Elsevier, Amsterdam, pp. 555—558.
 
(6) MacGregor, J. T., Heddle, J. A. Hite, M., Margolin, G. H., 
Ramel, C, Salamone, M. F., Tice, R. R., and Wild, D. (1987), 
Guidelines for the Conduct of Micronucleus Assays in Mammalian Bone Marrow Erythrocytes,  Mutation Res.,  189, 
pp. 103—112.
 
(7) MacGregor, J. T., Wehr, C. M., Henika, P. R. and Shelby, M. 
E. (1990), The in vivo Erythrocyte Micronucleus Test: Measu ­
rement at Steady State Increases Assay Efficiency and Permits Integration with Toxicity Studies,  Fund. Appl. Toxicol.  14, pp. 
513 —522.
 
(8) Hayashi, M., Morita, T., Kodama, Y., Sofumi, T. and Ishidate, 
M. Jr. (1990), The Micronucleus Assay with Mouse Peripheral 
Blood Reticulocytes Using Acridine Orange-Coated Slides,  
Mutation Res.,  245, pp. 245—249.  
(9) The Collaborative Study Group for the Micronucleus Test 
(1992). Micronucleus Test with Mouse Peripheral Blood Eryth ­
rocytes by Acridime Orange Supravital Staining: The Summary 
Report of the 5th Collaborative Study by CSGMT/JEMMS, 
MMS,  Mutation Res.,  278, pp. 83—98.  
(10) The Collaborative Study Group for the Micronucleus Test 
(CSGMT/JEMMS, MMS: The Mammalian Mutagenesis Study Group of the Environmental Mutagen Society of Japan) (1995), Protocol recommended for the short-term 
mouse peripheral blood micronucleus test,  Mutagenesis,  10, 
pp. 53—159.
 
(11) Hayashi, M., Tice, R. R., MacGregor, J. T., Anderson, D., 
Blackey, D. H., Kirsch-Volders, M., Oleson, Jr. F. B., Pacc ­
hicrotti, F., Romagna, F., Shimada, H. Sutou, S. and Vannier, 
B. (1994), in Vivo Rodent Erythrocyte Micronucleus Assay,  
Mutation Res.,  312, pp. 293—304.  
(12) Higashikuni, N. and Sutou, S. (1995), An optimal, generalised 
sampling time of 30 ± 6 h after double dosing in the mouse peripheral micronucleus test,  Mutagenesis,  10, pp. 313—319.
 
(13) Fielder, R. J., Allen, J. A., Boobis, A. R., Botham, P. A., Doe, 
J., Esdaile, D. J., Gatehouse, D. G., Hodson-Walker, G., 
Morton, D. B., Kirkland, D. J. and Rochold, M. (1992), 
Report of British Toxicology Society/UK Environmental Mutagen Society Working Group: Dose Setting in In Vivo Mutagenicity Assays,  Mutagenesis, 7,  pp. 313—319.
 
(14) Hayashi, M., Sofumi, T. and Ishidate, M. Jr. (1983), An 
Application of Acridine Orange Fluorescent Staining to the 
Micronucleus Test,  Mutation Res.,  120, pp. 241—247.  
(15) MacGregor, J. T., Wehr, C. M. and Langlois, R. G. (1983), A 
Simple Fluorescent Staining Procedure for Micronuclei and 
RNA in Erythrocytes Using Hoechst 33258 and Pyromin Y,  
Mutation Res.,  120, pp. 269—275.  
(16) Romagna, F. and Staniforth, C. D. (1989), The automated bone 
marrow micronucleus test,  Mutation Res.,  213, pp. 91—104.  
(17) Gollapudi, B. and McFadden, L. G. (1995), Sample size for 
the estimation of polychromatic to normochromatic erythrocyte 
ratio in the bone marrow micronucleus test,  Mutation Res.,  
347, pp. 97—99.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 335
 
(18) Richold, M., Ashby, J., Bootman, J., Chandley, A., Gatehouse, 
D. G. and Henderson, L. (1990), In Vivo Cytogenetics Assay, 
w: D. J. Kirkland (ed.),  Basic Mutagenicity tests, UKEMS 
Recommended Procedures, UKEMS Sub-Committee on Guidelines for Mutagenicity Testing. Report, Part 1, revised,  
Cambridge University Press, Cambridge, New York, Port 
Chester, Melbourne, Sydney, pp. 115—141.
 
(19) Lovell, D. P., Anderson, D., Albanese, R., Amphlett, G. E., 
Clare, G., Ferguson R., Richold, M., Papworth, D. G. and 
Savage, J. R. K. (1989), Staticical Analysis of In Vivo Cyto ­
genetic Assays, w: D. J. Kirkland (ed.),  Statistical Evaluation 
of Mutagenicity Test Data. UKEMS Sub-Committee on 
Guidelines for Mutagenicity Testing. Report, Part III,  
Cambridge University Press, Cambridge, New York, Port Chester, Melbourne, Sydney, pp. 184—232.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 336
 
Б.13/14.  МУТАГЕННОСТ  — БАКТЕРИИ  ЗА ТЕСТВАНЕ  НА 
ОБРАТНИ  МУТАЦИИ  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е изцяло  подобен  на бактериалния  тест за 
обратни  мутации  на ОECD TG 471 от 1997 г. 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Бактериалният  тест за обратни  мутации  използва  изискващи  
аминокиселина  щамове  на Salmonella typhimurium  и на Esche­
richia coli,  за да се открият  точкови  мутации , състоящи  се в 
заместване , добавяне  или делеция  на една  или няколко  ДНК  
базови  двойки  (1) (2) (3). Принципът  на настоящия  бактериален  
тест за обратни  мутации  се състои  в това, че той открива  
мутации , които  обръщат  мутациите , налични  в тестваните  
щамове , и възстановяват  функционалните  способности  на 
бактериите  да синтезират  основна  аминокиселина . Реверта­  
нтните  бактерии  се откриват  по способността  им да растат  при 
отсъствието  на аминокиселина , изисквана  от родителския  
тестван  щам. 
Точковите  мутации  са причината  за много  човешки  генетични  
заболявания  и има фактически  доказателства , че точковите  
мутации  в онкогени  и туморопотискащи  гени  на соматични  
клетки  участват  в образуването  на тумори  у хора  и експериме­  
нтални  животни . Бактериалният  тест за обратни  мутации  е бърз , 
евтин  и относително  лесен  за провеждане . Много  от тестваните  
щамове  имат  няколко  характеристики , които  ги правят  по- 
чувствителни  за откриване  на мутации , включително  
реагиращи  секвенции  на ДНК  в положение  на реверсия , 
повишена  клетъчна  пропускливост  към големи  молекули  и 
елиминиране  на системи  за репарация  на ДНК  или увелича­  
ването  на репарационните  процеси  на ДНК , при които  са 
възможни  грешки . Специфичността  на тестваните  щамове  
може  да даде  полезна  информация  за типовете  мутации , които  
се индуцират  от генотоксични  агенти . За бактериалните  тестове  
за обратни  мутации  съществува  огромна  база данни  с резултати  
за голямо  разнообразие  от структури , а също  така са 
разработени  и добре  установени  методологии  за тестване  на 
химикали  с различни  физикохимични  свойства , в т.ч. летливи  
съединения . 
Вижте  също  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Тест  за обратни  мутации  в Salmonella typhimurium  или Esche­
richia coli  открива  мутация  в нуждаещия  се от аминокиселина  
щам (съответно  хистидин  или триптофан ), за да се получи  
независим  от външна  доставка  на аминокиселина  щам. 
Мутагени  — заместители  на основна  двойка , са агенти , 
причиняващи  основна  промяна  в ДНК . В реверсивен  тест тази 
промяна  може  да възникне  от страната  на първоначалната  
мутация  или от втора  страна  в бактериалния  геном . 
Фреймшифт  мутагени  са агенти , предизвикващи  добавянето  
или делецията  на една  или повече  основни  двойки  в ДНК , 
като по този начин  се променя  четящата  рамка  в РНК . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 337
 
1.3. НАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
Бактериалният  тест за обратни  мутации  използва  прокариотни  
клетки , които  се различават  от клетките  на бозайниците  по 
фактори , като поглъщане , метаболизъм , хромозомна  структура  
и ДНК  репарационни  процеси . Провежданите  тестове  in vitro  
по принцип  изискват  използването  на екзогенен  източник  на 
метаболична  активация . Системите  in vitro  за метаболична  
активация  не могат  изцяло  да имитират  условията  in vivo  на 
бозайниците . Следователно  тестът  не осигурява  пряка  
информация  за мутагенната  и канцерогенната  сила  на дадено  
вещество  при бозайници . 
Бактериалният  тест за обратни  мутации  обикновено  се използва  
като първоначално  откриване  на генотоксична  дейност , и в 
частност  на дейност , индуцираща  точкова  мутация . Обширна  
база данни  е показала , че много  химикали , които  са полож­  
ителни  при настоящия  тест, също  проявяват  мутагенна  
активност  при други  тестове . Има примери  за мутагенни  
агенти , които  не се откриват  с настоящия  тест; причините  за 
тези недостатъци  могат  да се припишат  на специфичното  
естество  на установената  крайна  точка , разлики  в метаболичната  
активация  или разлики  в бионаличността . От друга  страна , 
факторите , които  подобряват  чувствителността  на бактериалния  
тест за обратни  мутации , могат  да доведат  до надценяване  на 
мутагенна  активност . 
Бактериалният  тест за обратни  мутации  може  да не е подходящ  
за оценката  на някои  класове  химични  вещества , например  
някои  съединения  с високо  бактерицидно  съдържание  (напр . 
някои  антибиотици ) и тези, за които  се смята  (или се знае), че 
си взаимодействат  конкретно  със системата  на клетъчна  репл­  
икация  у бозайниците  (напр . някои  инхибитори  на топоизо­  
меразата  и някои  нуклеозидни  аналози ). В подобни  случаи  
може  би по-подходящи  са тестовете  за мутации  при бозайници . 
Въпреки  че много  съединения , които  са положителни  в 
настоящия  тест, са канцерогени  за бозайниците , съответствието  
не е абсолютно . То зависи  от химичния  клас, а има канцерогени , 
които  не се откриват  с настоящия  тест, тъй като те действат  чрез 
други , негенотоксични  механизми  или механизми , които  не се 
срещат  в бактериалните  клетки . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
Суспензии  на бактериални  клетки  се експонират  на възде­  
йствието  на тестваното  вещество  с наличие  и отсъствие  на 
система  за екзогенна  метаболична  активация . При метода  с 
посяване  на блюдо  тези суспензии  се смесват  с пласт  от агар 
и незабавно  се посяват  в блюдо  върху  минимална  среда . При 
метода  с предварително  инкубиране  сместа  за обработване  се 
инкубира  и след  това се смесва  с пласт  от агар, преди  да се 
посее  в блюдо  върху  минимална  среда . При двата  метода  след  
два или три дни инкубация  се преброяват  ревертантните  
колонии  и се сравняват  с броя  на спонтанни  ревертантни  
колонии  в контролни  плочки  с разтворител . 
Описани  са няколко  процедури  за провеждането  на 
бактериалния  тест за обратни  мутации . Измежду  най-често  
използваните  са методът  с посяване  в блюдо  (1) (2) (3) (4), 
прединкубационният  метод  (2) (3) (5) (6) (7) (8), флуктуац­  
ионният  метод  (9) (10) и суспензионният  метод  (11). Описани  
са и модификации  за тестване  на газове  или пари  (12).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 338
 
Описаните  в метода  процедури  се отнасят  главно  за метода  с 
посяване  в блюдо  и прединкубационния  метод . Който  и да е от 
тях е приемлив  за провеждане  на опити  както  със, така и без 
метаболична  активация . Някои  вещества  могат  да се открият  по- 
ефикасно , като се използва  прединкубационният  метод . Тези  
вещества  принадлежат  към химични  класове , включващи  
алифатни  нитрозамини  с къси  вериги , двувалентни  метали , 
алдехиди , азо багрила  и диазо  съединения , пиролизидинови  
алкалоиди , алилни  съединения  и нитросъединения  (3). 
Признава  се също , че някои  класове  мутагени  не винаги  се 
откриват  със стандартните  процедури , като метода  на посяване  
в блюдо  или прединкубационния  метод . Те следва  да се смятат  
за „специални  случаи “ и силно  се препоръчва  за откриването  им 
да се използват  други  процедури . Следните  „специални  случаи “ 
биха  могли  да бъдат  идентифицирани  (заедно  с примери  за 
процедурите , които  биха  могли  да се използват  за откриването  
им): азо багрила  и диазо  съединения  (3) (5) (6) (13), газове  и 
летливи  химикали  (12) (14) (15) (16) и гликозиди  (17) (18). 
Отклонение  от стандартната  процедура  следва  да бъде  научно  
обосновано . 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
1.5.1.  Подготовка  
1.5.1.1.  Бактерии  
Свежи  бактериални  култури  следва  да се отглеждат  до късната  
експоненциална  или ранна  стационарна  фаза  на растеж  
(приблизително  10  9 клетки  на ml). He следва  да се използват  
култури  в късна  стационарна  фаза . От първостепенна  важност  
е културите , използвани  в опита , да съдържат  висок  титър  
жизнеспособни  бактерии . Титърът  може  да се илюстрира  с 
контролни  данни  от предишни  изследвания  за кривите  на 
растежа  или във всеки  анализ  на опита  чрез определяне  колич­  
ествата  на жизнеспособни  клетки  чрез експеримент  с посев  в 
блюдо . 
Препоръчителната  температура  на инкубация  е 37 o С. 
Следва  да се използват  най-малко  пет бактериални  щама . Те 
включват  четири  щама  на Salmonella typhimurium  (TA 1535; 
TA 1537 или TA97a или TA97; TA98; и TA100), които  са 
показали , че са надеждни  и репродуктивно  реагиращи  между  
лабораториите . Тези  четири  щама  на Salmonella typhimurium  
имат  GC основни  двойки  на главната  реверсивна  страна  и е 
известно , че те не биха  могли  да открият  някои  оксидиращи  
мутагени , напречно  свързващи  се агенти  и хидразини . 
Подобни  вещества  могат  да се открият  с щамове  на Escherichia 
coli WP2 или Salmonella typhimurium  TA102 (19), които  имат  AT 
основна  двойка  на главната  реверсивна  страна . Следователно  
препоръчителната  комбинация  от щамове  е: 
— Salmonella typhimurium  TA1535, и 
— Salmonella typhimurium  TA1537 или TA97 или TA97a, и 
— Salmonella typhimurium  TA98, и 
— Salmonella typhimurium  TA100, и 
— Escherichia coli  WP2 uvrA, или Escherichia coli  WP2 uvrA 
(pKM101), или Salmonella typhimurium  TA102.  
За да се открият  напречно  свързващи  се мутагени , може  би е за 
предпочитане  да се включи  ТА102 или да се добави  щам of 
Escherichia coli  с изобилие  от ДНК  репарации  (напр . Escherichia 
coli WP2 или Escherichia coli  WP2 (pKM101).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 339
 
Следва  да се използват  установените  процедури  за приготвяне  
на изходна  култура , проверка  на маркера  и съхранение . Следва  
да се посочи  необходимата  за растеж  аминокиселина  за приг­  
отвянето  на всяка  замразена  изходна  култура  (хистидин  за 
щамове  на Salmonella typhimurium  и триптофан  за щамове  на 
Escherichia coli).  По аналогичен  начин  следва  да се проверят  
други  фенотипни  характеристики , а именно : наличието  или 
отсъствието  на плазмиди  на R-фактор , при необходимост  (т.е. 
устойчивост  на ампицилин  в щамовете  ТА98, ТА100 и ТА97а 
или ТА97, WP2 uvrA и WP2 uvrA (pKM101), и устойчивост  на 
ампицилин  + тетрациклин  в щам ТА 102); наличието  на 
характерни  мутации  (т.е. rfa мутация  в Salmonella typhimurium  
чрез чувствителност  към кристално  виолетово , и uvrA мутация  в 
Escherichia coli  или uvrB мутация  в Salmonella typhimurium  чрез 
чувствителност  към ултравиолетова  светлина ) (2) (3). Щамовете  
следва  също  така да произвеждат  спонтанни  ревертантни  
колонии  в блюдо  в рамките  на честотните  обхвати , които  се 
очакват  от контролните  данни , получени  от предишни  
изследвания  в лабораторията  и, за предпочитане , в обхвата , 
описан  в литературата . 
1.5.1.2.  Среда  
Използва  се подходящ  минимален  агар (напр . съдържащ  
минимална  среда  Е на Фьогел -Бонер  и глюкоза ), и пласт  от 
агар, съдържащ  хистидин  и биотин  или триптофан , за да се 
получат  няколко  клетъчни  деления  (1) (2) (9).  
1.5.1.3.  Метаболична  активация  
Бактериите  следва  да се ескпонират  на тестваното  вещество , 
както  при наличие , така и при липса  на подходяща  система  за 
метаболична  активация . Най-често  използваната  система  е 
постмитохондрична  фракция  (S9) с добавка  на ко-фактор , приг­  
отвена  от черните  дробове  на гризачи , третирани  с ензимно - 
индуциращи  реактиви . като Ароклор  1254 (1) (2) или смес  от 
фенобарбитон  и ß-нафтофлавон  (18) (20) (21). Постмито­  
хондричната  фракция  обичайно  се използва  с концентрации  в 
обхвата  от 5 до 30 % v/v в сместа  S9. Изборът  и състоянието  
на системата  за метаболична  активация  може  да зависи  от класа  
на тествания  химикал . В някои  случаи  е подходящо  да се 
използва  повече  от една  концентрация  на постмитохондрична  
фракция . За азо багрила  и диазо  съединения  може  да е по- 
подходяща  редуцираща  система  за метаболична  активация  (6) 
(13).  
1.5.1.4.  Тествано  вещество /приготвяне  
Твърдите  вещества  за теста  следва  да се разтворят  или 
суспендират  в подходящи  разтворители  или носители  и, при 
необходимост , да се разредят  преди  третиране  на клетките . 
Течните  вещества  за теста  могат  да се добавят  директно  към 
системите  за тестване  и/или да се разредят  преди  третиране . 
Следва  да се използват  пресни  препарати  на тестваното  
вещество , освен  ако данните  за устойчивостта  му не показват , 
че може  да се съхранява . 
Не следва  да има съмнения  за химическа  реакция  на 
разтворителя /носителя  с тестваното  вещество  и той следва  да е 
съвместим  с оцеляването  на бактериите  и активността  на S9 
(22). Ако се използват  други  освен  добре  познатите  
разтворители /носители , включването  им в теста  следва  да се 
подкрепи  от данни  за съвместимостта  им. Препоръчва  се, 
винаги  когато  е възможно , първо  да се разглежда  възможността  
за прилагането  на воден  разтворител /носител . При тестването  на 
вещества , нестабилни  във вода , използваните  органични  разт­  
ворители  не следва  да съдържат  вода . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 340
 
1.5.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.5.2.1.  Тествани  щамове  (вж. 1.5.1.1)  
1.5.2.2.  Концентрация  на експозиция  
Измежду  критериите , които  следва  да се вземат  предвид  при 
определянето  на най-високото  количество  на тестваното  
вещество , са цитотоксичността  и разтворимостта  в окончат­  
елната  смес  за третиране . 
Полезно  би било  да се определят  токсичността  и неразт­  
воримостта  в предварителен  опит . Цитотоксичността  може  да 
се открие  чрез намаляване  на броя  на ревертантните  колонии , 
почистване  или намаляване  на фона , или степента  на оцеляване  
на третираните  култури . Цитотоксичността  на едно  вещество  
може  да се промени  в присъствието  на системи  за метаболична  
активация . Неразтворимостта  следва  да се оценява  като утаяване  
в крайната  смес  при реални  условия  за провеждане  на теста  и е 
видима  с просто  око. 
Препоръчителната  максимална  тестова  концентрация  за разт­  
ворими  нецитотоксични  вещества  е 5 mg/ блюдо  или 5 
μl/блюдо . За нецитотоксични  вещества , които  не са разтворими  
при 5 mg/блюдо  или 5 μl/блюдо , една  или повече  тествани  
концентрации  следва  да са неразтворими  в крайната  смес  за 
третиране . Тествани  вещества , които  вече са цитотоксични  под 
5 mg/блюдо  или 5 μl/блюдо , следва  да се тестват  до границата  
на цитотоксична  концентрация . Преципитатът  не следва  да 
влияе  на отчитането . 
Използват  се най-малко  пет различни , даващи  възможност  за 
анализ  концентрации  на тестваното  вещество  на приблизително  
полулогаритмични  (т.e. √10) интервали  между  тестваните  точки  
за начален  опит . Могат  да бъдат  подходящи  и по-малки  
интервали , когато  се изследва  реакция  на концентрация . 
Тестване  над концентрацията  от 5 mg/блюдо  или 5 μl/блюдо  
може  евентуално  да се извършва , когато  се изследват  
вещества , съдържащи  значителни  количества  потенциално  
мутагенни  примеси . 
1.5.2.3.  Отрицателни  и положителни  контроли  
Във връзка  с анализа  на всеки  отделен  опит  следва  да се 
включват  паралелни  положителни  и отрицателни  (разтворител  
или носител ) контроли  със специфичен  щам, както  със, така и 
без метаболична  активация . Следва  да се избират  положит­  
елните  контролни  концентрации , показващи  ефективно  
провеждане  на всеки  опит . 
За тестове  със система  за метаболична  активация  референт­  
ното (ите) вещество (а) за положителни  контроли  се избира (т) 
въз основа  на вида  на използваните  бактериални  щамове . 
Следните  вещества  са примери  за подходящи  положителни  
контроли  за тестове  с метаболична  активация : 
CAS № EINECS № Вещество  
781-43-1 212-308-4 9,10- диметилантрацен  
57-97-6 200-359-5 7,1 2- диметилбенз [а]антрацен  
50-32-8 200-028-5 бензо [а]пирен  
613-13-8 210-330-9 2- аминоантрацен  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 341
 
CAS № EINECS № Вещество  
50-18-0 циклофосфамид  монохидрат  
6055-19-2 200-015-4 циклофосфамид  
Следното  вещество  е подходяща  положителна  контрола  за 
метода  с редуцираща  метаболична  активация : 
CAS № EINECS № Вещество  
573-58-0 209-358-4 конгочервено  
Не следва  да се използва  2-аминоантрацен  като единствен  
показател  за ефикасността  на сместа  S9. Ако се използва  2- 
аминоантрацен , всяка  партида  от S9 следва  също  да се 
характеризира  с мутаген , изискващ  метаболична  активация  от 
микрозомни  ензими , напр ., бензо [а]пирен , диметилбензантрацен . 
Следните  вещества  са примери  на специфични  по щам полож­  
ителни  контроли  за тестове  без система  за екзогенна  мета­  
болична  активация : 
CAS № EINECS № Вещество  Щам 
26628-22-8 247-852-1 натриев  азид  TA 1535 и TA 100 
607-57-8 210-138-5 2- нитрофлуорен  TA 98 
90-45-9 201-995-6 9- амноакридин  TA 1537, TA 97 и TA 97a 
17070-45-0 241-129-4 ICR 191 TA 1537, TA 97 и TA 97a 
80-15-9 201-254-7 кумол  хидроперокисид  TA 102 
50-07-7 200-008-6 митомицин  С WP2 uvrA и TA 102 
70-25-7 200-730-1 N- етил -N-нитpo-N-нитрозо­  
гуанидин  WP2, WP2uvrA и WP2uvrA 
(pKM101) 
56-57-5 200-281-1 4- нитрохинолин -1-оксид  WP2, WP2uvrA и WP2uvrA 
(pKM101) 
3688-53-7 фурилфурамид  (AF2) щамове , съдържащи  плазмид  
Могат  да се използват  други  референтни  вещества  за полож­  
ителни  контроли . За положителна  контрола  следва  да се 
разглежда  използването  на химикали , принадлежащи  към 
химичен  клас, когато  такива  са налични . 
Следва  да бъдат  включени  отрицателните  контроли , състоящи  се 
само  от разтворител  или носител  в средата  за третиране , и 
третирани  по същия  начин  както  опитните  групи . В допълнение  
към това следва  също  да се използват  нетретирани  контроли , 
освен  ако няма  исторически  контролни  данни  от предишни  
изследвания , показващи , че избраният  разтворител  не 
причинява  вредни  или мутагенни  ефекти . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 342
 
1.5.3.  Процедура  
При метода  на посяване  в блюдо  (1) (2) (3) (4) без метаболична  
активация  се смесват  обичайно  0,05 ml или 0,1 ml тестовите  
разтвори , 0,1 ml свежа  бактериална  култура  (съдържаща  около  
10 8 жизнеспособни  клетки ) и 0,5 ml стерилен  буфер  с 2,0 ml 
слой  от агар. За тест с метаболична  активация  се смесват  обик­  
новено  0,5 ml от сместа  за метаболична  активация , съдържаща  
адекватно  количество  постмитохондрична  фракция  (в границите  
от 5 до 30 % v/v в сместа  за метаболична  активация ), със слой  
от агар (2,0 ml) заедно  с бактериите  и тестваното  вещество /­ 
тестван  разтвор . Съдържанието  на всяка  епруветка  се смесва  и 
изсипва  върху  повърхността  на блюдо  с минимален  агар. Слоят  
от агар се оставя  да се втвърди  преди  инкубацията . 
При прединкубационния  метод  (2) (3) (5) (6) тестваното  
вещество /тестваният  разтвор  се инкубира  предварително  с 
тествания  щам (съдържащ  около  10  8 жизнеспособни  клетки ) и 
стерилен  буфер  или система  за метаболична  активация  (0,5 ml) 
обичайно  за 20 или повече  минути  при 30—37  o С преди  
смесването  със слоя  от агар и изливането  върху  повърхността  
на блюдо  с минимален  агар. Обикновено  0,05 или 0,1 ml от 
тестваното  вещество /тестван  разтвор , 0,1 ml бактерии  и 0,5 ml 
от S9 или стерилен  буфер  се смесват  с 2,0 ml слой  от агар. 
Епруветките  се аерират  по време  на предварителната  
инкубация  с шейкър . 
За адекватна  оценка  на променливостта  при всяко  ниво  на 
дозиране  се използват  по три блюда . Използването  на две 
блюда  е приемливо , когато  е научно  обосновано . Загубата  по 
невнимание  на блюдо  не обезсилва  опита  по необходимост . 
Газообразни  или летливи  вещества  се изпитват  чрез подходящи  
методи , като например  в запечатани  съдове  (12) (14) (15) (16).  
1.5.4.  Инкубация  
Всички  блюда  на даден  тест се инкубират  при 37  o С за 48—72 
часа. След  инкубационния  период  се преброяват  ревертантните  
колонии  на блюдо . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Данните  се представят  като брой  ревертантни  колонии  на 
блюдо . Също  се дава броят  ревертантни  колонии  както  върху  
блюдата  за отрицателни  (контрола  на разтворител  и нетретирана  
контрола , ако се използва ), така и за положителните  контроли . 
Представят  се броят  на отделните  блюда , средният  брой  
ревертантни  колонии  на блюдо  и стандартното  отклонение  за 
тестваното  вещество  и положителните  и отрицателните  
(третирани  и/или разтворител ) контроли . 
Няма  изискване  за потвърждаване  на явно  положителна  реакция . 
Резултатите , които  не са категорични , следва  да се изяснят  с 
още тестове , като за предпочитане  е да се изменят  условията  
на експеримента . Отрицателните  резултати  следва  да се 
потвърдят  за всеки  случай  поотделно . В случаите , когато  не се 
смята  необходимо  потвърждаването  на отрицателни  резултати , 
следва  да се даде  обосновка . Изменението  на параметрите  на 
изследването  с цел разширяване  на обхвата  на оценяваните  
условия  следва  да се вземе  под внимание  при следващите  
експерименти . Параметрите  на изследването , които  биха  могли  
да се променят , включват  границите  на концентрацията , метода  
на третиране  (посев  върху  блюдо  или течна  прединкубация ) и 
условията  на метаболична  активация . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 343
 
2.2. ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , 
като например  увеличение  на концентрацията  спрямо  тествания  
обхват  и/или репродуцируемо  увеличение  при една  или повече  
концентрации  на броя  на ревертантни  колонии  на блюдо  в поне  
един  щам със или без система  за метаболична  активация  (23). 
Първо  следва  да се разгледа  биологичната  значимост  на резулт­  
атите . При оценката  на резултатите  от теста  биха  могли  да се 
използват  статистически  методи  (24). Статистическата  
значимост  не следва  да е единственият  решаващ  фактор  за 
положителна  реакция . 
Тествано  вещество , за което  резултатите  не отговарят  на горните  
критерии , се смята  за немутагенно  в настоящия  тест. 
Въпреки  че повечето  експерименти  дават  ясно  положителни  или 
отрицателни  резултати , в редки  случаи  наборът  данни  изключва  
възможността  да се направи  категорична  преценка  за актив­  
ността  на тестваното  вещество . Резултатите  могат  да останат  
двусмислени  или под въпрос , независимо  от това колко  пъти  е 
повторен  опитът . 
Положителните  резултати  от бактериалния  тест за обратни  
мутации  показват , че веществото  индуцира  точкови  мутации  
чрез заместване  на бази  или фреймшифтове  в генома  на 
Salmonella typhimurium  и/или Escherichia соli. Отрицателните  
резултати  показват , че при условията  за провеждане  на теста  
тестваното  вещество  не е мутагенно  в тествания  вид. 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  следва  да включва  следната  информация : 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на носител , 
— разтворимост  и стабилност  на тестваното  вещество  в 
разтворител /носител , ако са известни . 
Щамове : 
— използвани  щамове , 
— брой  на клетки  на култура , 
— характеристики  на щама . 
Условия  за провеждане  на теста : 
— количество  тествано  вещество  на блюдо  (mg/блюдо  или 
μl/блюдо ) c основна  причина  за избора  на доза и брой  на 
блюдата  на концентрация , 
— използвани  среди , 
— тип и състав  на системата  за метаболична  активация , в т.ч. 
критерии  за приемливост , 
— процедури  на третиране . 
Резултати : 
— признаци  на токсичност , 
— признаци  на утаяване , 
— брой  отделни  блюда , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 344
 
— среден  брой  на ревертантните  колонии  на блюдо  и 
стандартно  отклонение , 
— взаимоотношение  доза-реакция , където  е възможно , 
— статистическа  оценка , ако има такава , 
— паралелни  отрицателни  (разтворител /носител ) и положителни  
контролни  данни  с обхват , средни  стойности  и стандартни  
отклонения , 
— —отрицателни  (разтворител /носител ) и положителни  
контролни  данни  от предишни  изследвания , с обхват , 
средни  стойности  и стандартни  отклонения . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Ames, B. N., McCann, J. and Yamasaki E. (1975), Methods of 
Detecting Carcinogens and Mutagens with the Salmonella/ Mammalian-Microsome Mutagenicity Test,  Mutation Res.,  
31, pp. 347—364.
 
(2) Maron, D. M. and Ames, B. N. (1983), Revised Methods for 
the Salmonella Mutagenicity Test,  Mutation Res.,  113, pp. 
173—215.  
(3) Gatehouse, D., Haworth, S., Cebula, T., Gocke, E., Kier, L., 
Matsushima, T., Melcion, C, Nohmi, T., Venitt, S. and Zeiger, E. (1994), Recommendations for the Performance of Bacterial 
Mutation Assays,  Mutation Res.,  312, pp. 217—233.
 
(4) Kier, L. D., Brusick D. J., Auletta, A. E., Von Halle, E. S., 
Brown, M. M., Simmon, V. F., Dunkel, V., McCann, J., 
Mortelmans, K., Prival, M., Rao, T. K. and Ray V. (1986),  
The Salmonella typhimurium/Mammalian  Microsomal Assay: 
A Report of the U.S. Environmental Protection Agency 
Gene-Tox Program,  Mutation Res.,  168, pp. 69—240.  
(5) Yahagi, T., Degawa, M., Seino, Y. Y., Matsushima, T., Nagao, 
M., Sugimura, T. and Hashimoto, Y. (1975), Mutagenicity of Carcinogen Azo Dyes and their Derivatives,  Cancer Letters  1, 
pp. 91—96.
 
(6) Matsushima, M., Sugimura, T., Nagao, M., Yahagi, T., Shirai, 
A. and Sawamura, M. (1980), Factors Modulating Mutage ­
nicity Microbial Tests, w:  Short-term Test Systems for 
Detecting Carcinogens,  ed. Norpoth K. H. and Garner, R. C, 
Springer, Berlin-Heidelberg-New York, pp. 273—285.  
(7) Gatehouse, D. G., Rowland, I. R., Wilcox, P., Callender, R. D. 
and Foster, R. (1980), Bacterial Mutation Assays, w:  Basic 
Mutagenicity TestS: UKEMS Part 1 Revised, ed. D. J. Kirkland,  Cambridge University Press, pp. 13—61.
 
(8) Aeschacher, H. U., Wolleb, U. and Porchet, L. (1987), Liquid 
Preincubation Mutagenicity Test for Foods,  J. Food Safety,  8, 
pp. 167—177.  
(9) Green, M. H. L., Muriel, W. J. and Bridges, B. A. (1976), Use 
of a simplified fluctuation test to detect low levels of 
mutagens,  Mutation Res.,  38, pp. 33—42.  
(10) Hubbard, S. A., Green, M. H. L., Gatehouse, D. and Bridges, 
J. W. (1984), The Fluctuation Test in Bacteria, w:  Handbook 
of Mutagenicity Test Procedures,  2nd Edition, ed. Kilbey, B. 
J., Legator, M., Nichols, W. and Ramel, C, Elsevier, 
Amsterdam-New York-Oxford, pp. 141—161.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 345
 
(11) Thompson, E. D. and Melampy, P. J. (1981), An Examination 
of the Quantitative Suspension Assay for Mutagenesis with 
Strains of  Salmonella typhimurium, Environmental Mutage ­
nesis,  3, pp. 453—465.  
(12) Araki, A., Noguchi, T., Kato, F. and Matsushima, T. (1994), 
Improved Method for Mutagenicity Testing of Gaseous 
Compounds by Using a Gas Sampling Bag,  Mutation Res.,  
307, pp. 335—344.  
(13) Prival, M. J., Bell, S. J., Mitchell, V. D., Reipert, M. D. and 
Vaughan, V. L. (1984), Mutagenicity of Benzidine and 
Benzidine-Congener Dyes and Selected Monoazo Dyes in a 
Modified Salmonella Assay,  Mutation Res.,  136, pp. 33—47.  
(14) Zeiger, E., Anderson, B. E., Haworth, S., Lawlor, T. and 
Mortelmans, K. (1992), Salmonella Mutagenicity Tests. V. 
Results from the Testing of 311 Chemicals,  Environ. Mol. 
Mutagen.,  19, pp. 2—141.  
(15) Simmon, V., Kauhanen, K. and Tardiff, R. G. (1977), 
Mutagenic Activity of Chemicals Identified in Drinking Water, in  Progress in Genetic Toxicology,  D. Scott, B. 
Bridges and F., Sobels (eds.) Elsevier, Amsterdam, pp. 
249—258.
 
(16) Hughes, T. J., Simmons, D. M., Monteith, I. G. and Claxton, 
L. D. (1987), Vaporisation Technique to Measure Mutagenic 
Activity of Volatile Organic Chemicals in the Ames/ ­
Salmonella Assay,  Environmental Mutagenesis,  9, pp. 
421—441.  
(17) Matsushima, T., Matsumoto, A., Shirai, M., Sawamura, M., 
and Sugimura, T. (1979), Mutagenicity of the Naturally 
Occurring Carcinogen Cycasin and Synthetic Methylazoxy Methane Conjugates in  Salmonella typhimurium, Cancer 
Res.,  39, pp. 3780—3782.
 
(18) Tamura, G., Gold, C, Ferro-Luzzi, A. and Ames, B. N. (1980), 
Fecalase: A Model for Activation of Dietary Glycosides to Mutagens by Intestinal Flora,  Proc. Natl. Acad. Sci.  USA, 
77, pp. 4961—4965.
 
(19) Wilcox, P., Naidoo, A., Wedd, D. J. and Gatehouse, D. G. 
(1990), Comparison of  Salmonella typhimurium  TA 102 with  
Escherichia coli  WP2 Tester strains,  Mutagenesis, 5,  pp. 
285—291.  
(20) Matsushima, T., Sawamura, M., Hara, K. and Sugimura, T. 
(1976), A Safe Substitute for Polychlorinated Biphenyls as 
an Inducer or Metabolic Activation Systems, w: In vitro  
Metabolic Activation in Mutagenesis Testing,  eds. F. J. de 
Serres et al. Elsevier, North Holland, pp. 85—88.  
(21) Elliot, B. M., Combes, R. D., Elcombe, C. R., Gatehouse, D. 
G., Gibson, G. G., Mackay, J. M. and Wolf, R. C. (1992), Alternatives to Aroclor 1254-induced S9 in  in vitro  Genoto­
xicity Assays,  Mutagenesis,  7, pp. 175—177.
 
(22) Maron, D., Katzenellenbogen, J. and Ames, B. N. (1981), 
Compatibility of Organic Solvents with the Salmonella/ ­
Microsome Test,  Mutation Res.,  88, pp. 343—350.  
(23) Claxton, L. D., Allen, J., Auletta, A., Mortelmans, K., 
Nestmann, E. and Zeiger, E. (1987), Guide for the  Salmonella 
typhimurium/Mammalian  Microsome Tests for Bacterial Muta ­
genicity,  Mutation Res.,  189, pp. 83—91.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 346
 
(24) Mahon, G. A. T., Green, M. H. L., Middleton, B., Mitchel, I., 
Robinson, W. D. and Tweats, D. J. (1989), Analysis of Data 
from Microbial Colony Assays, w:  UKEMS Sub-Committee on 
Guidelines for Mutagenicity Testing, Part II. Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data,  ed. Kirkland, D. J., 
Cambridge University Press, pp. 28—65.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 347
 
Б.15. ИЗПИТВАНЕ  ЗА МУТАГЕННОСТ  И ПРЕСЯВАЩО  
ИЗПИТВАНЕ  ЗА КАНЦЕРОГЕННОСТ  ГЕННИ  МУТАЦИИ  
— SACCHAROMYCES CEREVISIAE  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
За измерване  продукцията  на генни  мутации , предизвикани  от 
химични  агенти  със или без метаболитно  активиране , могат  да 
се използват  разнообразни  хаплоидни  и диплоидни  щамове  на 
дрождите  Saccharomyces cerevisiae.  
Използват  се системите  за прави  мутации  в хаплоидни  щамове , 
например  измерване  на мутацията  от червени , аденин  зависими  
мутанти  (ade-1, ade -2) към двойно  аденин  зависими  бели  
мутанти , и селективни  системи , например  предизвикване  на 
резистентност  към канавнаин  и циклохексимид . 
Най-широко  утвърдената  система  за обратни  мутации  включва  
използването  на хаплоидния  щам XV 185—14 С, който  е носител  
на охра  „безсмислени “ мутации  ade 2—1,  arg 4—17,  lys 1—1 и 
trp 5—48, които  са обратими  от мутагени  за заместване  на бази, 
които  предизвикват  специфични  по място  мутации  или охра  
потискащи  мутации . XV 185—14 С е носител  и на маркера  his 
1—7, „променяща  смисъла “ мутация , която  е обратима  главно  
от мутации  на друго  място , и маркера  horn  3—10, който  е 
обратим  от мутагени , свързани  с изместване  на рамката . 
При диплоидните  щамове  на S. cerevisiae  единственият  широко  
използван  щам е D 7 , който  е хомозиготен  по ilv 1—92.  
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Разтворите  на изпитваните  химически  вещества  следва  да бъдат  
приготвени  непосредствено  преди  изпитването , като се използва  
подходящ  носител . При органични  съединения , които  не са разт­  
ворими  във вода , следва  да се използва  не по-концентриран  от 
2 % об/об разтвор  на органични  разтворители , като етанол , 
ацетон  или диметилсулфоксид . Крайната  концентрация  на 
носителя  не следва  да оказва  значимо  влияние  върху  клетъчната  
жизнеспособност  и растежните  характеристики . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 348
 
М е т а б о л и т н о а к т и в и р а н е 
Клетките  следва  да бъдат  подложени  на експозиция  на 
изпитваните  химически  вещества  както  в присъствие , така и в 
отсъствие  на подходяща  екзогенна  система  за метаболитно  
активиране . 
Най-често  използваната  система  е допълнена  с ко-фактор  мито­  
хондриална  фракция  от черни  дробове  на гризачи , 
предварително  обработени  със средства  за ензимна  индукция . 
За метаболитно  активиране  може  да бъде  подходящо  и 
използването  на други  видове , тъкани , постмитоходриални  
фракции  или процедури . 
Условия  на изпитване  
Е к с п е р и м е н т а л н и щ а м о в е 
При изпитвания  за генни  мутации  най-широко  се използват  
хаплоидният  щам XV185-14C и диплоидният  щам D 7 . Други  
щамове  също  могат  да бъдат  подходящи . 
С р е д и 
За определяне  броя  на преживелите  микроорганизми  и на 
мутантите  се използват  подходящи  среди  за култивиране . 
И з п о л з в а н е н а п о л о ж и т е л н и и о т р и ц а т е л н и 
к о н т р о л и 
Паралелно  следва  да се използват  положителни  и отрицателни  
контроли  и контроли  за разтворителите . За всяка  конкретна  
мутационна  крайна  точка  следва  да се използват  подходящи  
химически  вещества  за положителни  контроли . 
Е к с п о з и ц и о н н а к о н ц е н т р а ц и я 
Следва  да се използват  поне  пет концентрации , които  са 
адекватно  разделени  една  от друга . За токсичните  вещества  
най-високата  изпитвана  концентрация  не следва  да понижава  
преживяемостта  под 5 до 10 %. Относително  неразтворимите  
във вода  вещества  следва  да се изпитват  до границата  на разт­  
воримостта  им, като се използват  подходящи  процедури . За 
лесно  разтворимите  във вода  нетоксични  вещества  високата  
концентрация  следва  да се определя  за всеки  конкретен  случай . 
У с л о в и я з а и н к у б и р а н е 
Петриевите  панички  се инкубират  в продължение  на четири  до 
седем  дни при 28 до 30  o С на тъмно . 
Ч е с т о т и н а с п о н т а н н и т е м у т а ц и и 
Следва  да се използват  субкултури  с честоти  на спонтанните  
мутации  в рамките  на приетия  нормален  диапазон . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 349
 
Б р о й н а п о в т о р е н и я т а 
За изследване  на прототрофи , получени  посредством  генна  
мутация , и за изследване  на клетъчната  жизнеспособност  
следва  да се използват  поне  по три петриеви  панички  за всяка  
концентрация . При експерименти  с маркери  като horn  3—10 с 
ниска  честота  на мутациите  броят  на използваните  петриеви  
панички  следва  да бъде  увеличен , за да се обезпечат  статист­  
ически  значими  данни . 
Процедура  
Третирането  на щамовете  S. Cerevisiae  обикновено  се извършва  
в течна  среда  с клетки  в стационарна  фаза  или фаза  на растеж . 
Първоначалните  експерименти  следва  да се провеждат  върху  
растящи  клетки . На експозиция  на изпитваното  химическо  
вещество  се подлагат  1 – 5 × 10  7 клетки /ml в продължение  на 
не повече  от 18 часа при 28 до 37 o С, като се разклащат . Когато  
е необходимо , по време  на третирането  се добавя  адекватно  
количество  система  за метаболитно  активиране . В края  на 
третирането  клетките  се центрофугират , промиват  се и се 
посяват  върху  подходяща  среда  за култивиране . След  
инкубиране  на петриевите  панички  се отчитат  преживяемостта  
и предизвикването  на генни  мутации . Ако първият  експеримент  
е отрицателен , тогава  следва  да се проведе  втори  експеримент , 
като се използват  клетки  в стационарна  фаза . Ако първият  
експеримент  е положителен , това се потвърждава  с помощта  
на подходящ  независим  експеримент . 
2. ДАННИ  
Данните  следва  да бъдат  представени  в табличен  вид, като се 
отбелязват  броят  на преброените  колонии , броят  на мутантите , 
преживяемостта  и честотата  на мутациите . Всички  резултати  
следва  да бъдат  потвърдени  в независим  експеримент . Данните  
следва  да бъдат  оценени  с помощта  на подходящи  статистически  
методи . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— използван  щам, 
— условия  на изпитването , клетки  в стационарна  фаза  или фаза  
на растеж , състав  на средите , температура  и продължит­  
елност  на инкубирането , система  за метаболитно  активиране , 
— условия  на третиране , нива  на експозиция , процедура  и 
продължителност  на третирането , температура  на третиране , 
положителни  и отрицателни  контроли , 
— брой  на преброените  колонии , брой  на мутантите , 
преживяемост  и честота  на мутантите , връзка  между  доза и 
отговор , ако е необходимо , статистическа  оценка  на данните , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите , 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 350
 
Б.16. МИТОТИЧНИ  РЕКОМБИНАЦИИ  —  ЅАССНА RОМУСЕ S 
СЕREVISIAE  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  Част  Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Митотичната  рекомбинация  при Saccharomyces сеrevisiae  може  
да бъде  открита  между  гените  (или по-общо , между  гена и 
неговия  центромер ) и в рамките  на отделните  гени . Първото  
явление  се нарича  кросинговър  и води  до получаване  на 
реципрочни  продукти , докато  второто  най-често  не е 
реципрочно  и се нарича  генна  конверсия . Кросинговърът  обик­  
новено  се изследва  посредством  получаване  на рецесивни  
хомозиготни  колонии  или сектори  в хетерозиготен  щам, 
докато  генната  конверсия  се изследва  посредством  получаване  
на прототрофни  ревертанти , получени  в ауксотрофен  
хетероалелен  щам и носещи  два различни  дефектни  алела  на 
един  и същ ген. Най-широко  използваните  за откриване  на 
митотична  генна  конверсия  щамове  са D 4 (хетероалелен  по аdе 
2 и trр 5), D  7 (хетероалелен  по trp 5), ВZ 34 (хетероалелен  по arg 
4) и JD1 (хетероалелен  по his 4 и trp 5). Митотичният  кроси­  
нговър , от който  се получават  червени  и розови  хомозиготни  
сектори , може  да се изследва  при D 5 или при D 7 (като се 
измерват  и митотичната  генна  конверсия , и обратната  мутация  
при ilv 1—92), като и двата  щама  са хетероалелни  за комплеме­  
нтните  алели  на adе 2. 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Разтворите  на изпитваните  химически  вещества  и съединенията  
за сравнение  следва  да бъдат  приготвени  непосредствено  преди  
изпитването , като се използва  подходящ  носител . При 
органични  съединения , които  не са разтворими  във вода , 
следва  да се използва  не по-концентриран  от 2 % об/об 
разтвор  на органични  разтворители , като етанол , ацетон  или 
диметилсулфоксид . Крайната  концентрация  на носителя  не 
следва  да оказва  значимо  влияние  върху  клетъчната  жизнес­  
пособност  и растежните  характеристики . 
М е т а б о л и т н о а к т и в и р а н е 
Клетките  следва  да бъдат  подложени  на експозиция  на 
изпитваните  химически  вещества  както  в присъствие , така и в 
отсъствие  на подходяща  система  за метаболитно  активиране . 
Най-често  използваната  система  е допълнена  с ко-фактор  мито­  
хондриална  фракция  от черни  дробове  на гризачи , 
предварително  обработени  със средства  за ензимна  индукция . 
За метаболитно  активиране  може  да бъде  подходящо  и 
използването  на други  видове , тъкани , постмитохондриални  
фракции  или процедури . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 351
 
Условия  на изпитване  
Е к с п е р и м е н т а л н и щ а м о в е 
Най-често  използвани  са диплоидните  щамове  D 4 , D 5 , D 7 и JD1. 
Може  да е целесъобразно  използването  на други  щамове . 
С р е д и 
За определяне  на преживяемостта  и честотата  на митотичните  
рекомбинации  се използват  подходящи  среди  за култивиране . 
И з п о л з в а н е н а п о л о ж и т е л н и и о т р и ц а т е л н и 
к о н т р о л и 
Паралелно  следва  да се използват  положителни  и отрицателни  
контроли  и контроли  за разтворителите . За всяка  конкретна  
рекомбинантна  крайна  точка  следва  да се използват  
подходящи  химически  вещества  за положителни  контроли . 
Е к с п о з и ц и о н н и к о н ц е н т р а ц и и 
Следва  да се използват  поне  пет концентрации  на изпитваното  
вещество , които  са адекватно  разделени  една  от друга . Сред  
факторите , които  следва  да се вземат  предвид , са клетъчната  
токсичност  и разтворимостта . Най-ниската  концентрация  не 
следва  да оказва  влияние  върху  клетъчната  жизнеспособност . 
За токсичните  химически  вещества  най-високата  изпитвана  
концентрация  не следва  да понижава  преживяемостта  под 5 до 
10 %. Относително  неразтворимите  във вода  химически  
вещества  следва  да се изпитват  до границата  на разтворимостта  
си, като се използват  подходящи  процедури . За лесно  разт­  
воримите  във вода  нетоксични  вещества  високата  концентрация  
следва  да се определя  за всеки  конкретен  случай . 
Клетките  могат  да бъдат  подложени  на експозиция  на 
изпитваните  химически  вещества  в стационарна  или растежна  
фаза  за периоди  с продължителност  до 18 часа. При продълж­  
ителни  периоди  на третиране  обаче  културите  следва  да бъдат  
огледани  микроскопски  за образуване  на спори , чието  
присъствие  прави  изпитването  невалидно . 
У с л о в и я з а и н к у б и р а н е 
Петриевите  панички  се инкубират  на тъмно  за четири  до седем  
дни при 28 до 30  o С. Петриевите  панички , използвани  за 
изследване  на червени  и розови  хомозиготни  сектори , 
получени  посредством  митотичен  кросинговър , следва  да бъдат  
съхранявани  в хладилник  (около  4 o С) за допълнителни  един  до 
два дни преди  отчитането , за да се даде  възможност  за развитие  
на съответните  пигментирани  колонии . 
С п о н т а н н и ч е с т о т и н а м и т о т и ч н и т е 
р е к о м б и н а ц и и 
Следва  да се използват  субкултури  с честоти  на спонтанните  
митотични  рекомбинантни  мутации  в рамките  на приетия  
нормален  диапазон . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 352
 
Б р о й н а п о в т о р е н и я т а 
За изследване  на прототрофи , получени  посредством  генна  
мутация , и за изследване  на клетъчната  жизнеспособност  
следва  да се използват  поне  по три петриеви  панички  за всяка  
концентрация . При изпитване  на рецесивни  хомозиготи , 
получени  посредством  митотичен  кросинговър , броят  на 
петриевите  панички  следва  да бъде  увеличен , за да се осигури  
адекватен  брой  колонии . 
Процедури  
Третирането  на щамовете  S. Сerevisiае обикновено  се извършва  
в течна  среда  с клетки  в стационарна  фаза  или фаза  на растеж . 
Първоначалните  експерименти  следва  да се провеждат  върху  
растящи  клетки . На експозиция  на изпитваното  химическо  
вещество  се подлагат  1 – 5 × 10  7 клетки /ml в продължение  на 
не повече  от 18 часа при 28 до 37 o С, като се разклащат . Когато  
е необходимо , по време  на третирането  се добавя  адекватно  
количество  система  за метаболитно  активиране . 
В края  на третирането  клетките  се центрофугират , промиват  се и 
се посяват  върху  подходяща  среда  за култивиране . След  
инкубиране  петриевите  панички  се отчитат  за преживяемост  и 
предизвикване  на митотична  рекомбинация . 
Ако първият  експеримент  е отрицателен , следва  да се проведе  
втори  експеримент , като се използват  клетки  в стационарна  
фаза . Ако първият  експеримент  е положителен , това се 
потвърждава  с помощта  на независим  експеримент . 
2. ДАННИ  
Данните  следва  да бъдат  представени  в табличен  вид, като се 
отбелязват  броят  на преброените  колонии , броят  на рекомбина­  
нтите , преживяемостта  и честотата  на рекомбинантите . 
Резултатите  следва  да бъдат  потвърдени  в независим  
експеримент . 
Данните  следва  да бъдат  оценени  с помощта  на подходящи  
статистически  методи . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— използван  щам, 
— условия  на изпитването , клетки  в стационарна  фаза  или фаза  
на растеж , състав  на средите , температура  и продължит­  
елност  на инкубирането , система  за метаболитно  активиране , 
— условия  на третиране , експозиционна  концентрация , 
процедура  и продължителност  на третирането , температура  
на третиране , положителни  и отрицателни  контролни  групи , 
— брой  на преброените  колонии , брой  на рекомбинантите , 
преживяемост  и честота  на рекомбинациите , ако е необ­  
ходимо , връзка  между  доза и отговор , статистическа  оценка  
на данните , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 353
 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 354
 
Б.17. МУТАГЕННОСТ  — IN VITRO  ТЕСТ  ЗА КЛЕТЪЧНИ  ГЕННИ  
МУТАЦИИ  ПРИ  БОЗАЙНИЦИ  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е изцяло  подобен  kd теста  in vitro  за клетъчни  
генни  мутации  при бозайници  на ОИСР  ТG 476 от 1997 г. 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Тестът  in vitro  за клетъчни  генни  мутации  при бозайници  може  
да се използва  за откриване  на генни  мутации , индуцирани  от 
химични  вещества . Подходящи  клетъчни  линии  са L5178Y на 
миши  лимфомни  клетки , линиите  СНО , СНО -АS52 и V79 на 
клетките  на китайски  хамстер  и ТК6 на човешки  лимфобл­  
астоидни  клетки  (1). В тези клетъчни  линии  най-често  
използваните  генетични  крайни  точки  измерват  мутацията  на 
киназата  на тимидина  (ТК) и трансферазата  на хипокснатин - 
гуанин  фосфорибозил  (НРRТ), както  и трансген  от транс­  
феразата  на ксантин -гуанин  фосфорибозил  (ХРRТ). Тестовете  
за мутации  на ТК, НРRТ и ХРRТ откриват  различни  спектри  
на генетични  събития . Автозомното  разполагане  на ТК и ХРRТ 
може  да даде  възможност  за откриването  на генетични  събития  
(напр . големи  делеции ), които  не се забелязват  на локуса  на 
НРRТ върху  X хромозоми  (2)(3)(4)(5)(6).  
В теста  in vitro  за клетъчни  генни  мутации  при бозайници  могат  
да се използват  култури  на установени  клетъчни  линии  или 
клетъчни  щамове . Клетките  се избират  въз основа  на способ­  
ността  за растеж  в дадена  култура  и устойчивостта  в честотата  
на спонтанните  мутации . 
Тестовете  in vitro  по принцип  изискват  екзогенен  източник  на 
метаболична  активация . Тази  система  за метаболична  активация  
не може  изпяло  да имитира  условията  in vivo  при бозайниците . 
Следва  да се избягват  условия , които  биха  довели  до резултати , 
неотразяващи  присъща  мутагенност . Положителни  резултати , 
които  не отразяват  присъща  мутагенност , могат  да възникнат  
от промени  в рН, осмотично  налягане  или високи  нива  на 
цитотоксичност  (7). 
Настоящият  тест се използва  за откриване  на евентуални  
мутагени  и канцерогени . Много  съединения , които  са полож­  
ителни  в настоящия  тест, са канцерогени  за бозайници ; все 
пак няма  идеално  съответствие  между  настоящия  тест и 
канцерогенността . Съответствието  зависи  от химичния  клас, а 
има все повече  доказателства  за това, че съществуват  
канцерогени , които  не се откриват  чрез настоящия  тест, 
защото  вероятно  те действат  чрез други , негенотоксични  
механизми  или механизми , отсъстващи  в бактериалните  клет­  
ки(6). 
Вижте  също  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Мутация  в поколението  напред : генна  мутация  от родителския  
тип на мутанта , от който  възниква  изменение  или загуба  на 
ензимна  активност  на функцията  на кодирания  протеин . 
Мутагени  — заместители  на основна  двойка : вещества , 
които  причиняват  заместване  на една  или няколко  основни  
двойки  в ДНК . 
Фреймшифт  мутагени : вещества , които  причиняват  добавяне  
или делеция  на една  или много  основни  двойки  в ДНК  
молекула . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 355
 
Време  на фенотипно  изразяване : период , през който  
непроменените  генни  продукти  са изчерпани  от новомутиралите  
клетки . 
Мутантна  честота : броят  на наблюдаваните  мутантни  клетки , 
разделен  на броя  на жизнеспособните  клетки . 
Относителен  общ растеж : увеличение  в броя  на клетките  за 
период  време  в сравнение  контролна  популация  клетки ; 
изчислен  като продукта  от суспензионния  растеж  спрямо  в 
отрицателната  контрола , умножен  по ефективността  (к.п.д.) на 
клониране  спрямо  отрицателна  контрола . 
Относителен  суспензионен  растеж : увеличение  в броя  на 
клетките  за период  на изразяване  спрямо  отрицателната  
контрола . 
Жизнеспособност : ефективността  на клониране  на третираните  
клетки  по време  на посяването  в блюдо  в селективни  условия  
след  периода  на изразяване . 
Оцеляване : ефективността  на клониране  на третираните  клетки , 
когато  са посети  в блюдо  в края  на периода  на третиране ; 
оцеляването  обикновено  се изразява  по отношение  на 
оцеляването  в контролната  клетъчна  популация . 
1.2. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
Клетките  с дефицит  от тимидин  киназа  (ТК) поради  мутацията  
ТК +/- → ТК -/- са устойчиви  на цитотоскичните  ефекти  на 
пиримидиновия  аналог  трифлуороитимидин  (ТFТ). Клетките  с 
изобилие  от тимидин  киназа  са чувствителни  към ТFТ, което  
причинява  инхибиране  на клетъчния  метаболизъм  и спира  по- 
нататъшното  клетъчно  деление . Така  мутантните  клетки  са 
способни  да пролиферират  в присъствието  на ТFТ, докато  
нормални  клетки , съдържащи  тимидин  киназа , не са. Анал­  
огично , клетките  с дефицит  от НРRТ или ХРRТ се избират  
според  устойчивостта  им към 6-тиогуанин  (ТG) или 8- 
азагуанин  (АС). Следва  внимателно  да се подходи  към 
свойствата  на тестваното  вещество , ако базов  аналог  или 
съединение  се тестват  в някой  от тестовете  за клетъчни  генни  
мутации  при бозайници . Например , следва  всяка  съмнителна  
селективна  токсичност , предизвикана  от тестваното  вещество  
за мутантни  или немутантни  клетки , да бъде  проучена . Следов­  
ателно  характеристиките  на селекционната  система /агент  следва  
да се потвърдят , когато  се тестват  химикали , структурно  
свързани  със селективния  агент  (8). 
Клетки  в суспензия  или еднослойна  култура  се излагат  на 
тестваното  вещество , със и без метаболична  активация , за 
подходящ  период  от време  и се субкултивират , за да се 
определи  цитотоксичността  и да се даде  възможност  за 
фенотипно  изразяване  преди  селекцията  на мутанти  (9) (10) 
(11) (12) (13). Цитотоксичността  обикновено  се определя  чрез 
измерване  на относителната  ефективност  на клониране  
(оцеляване ) или относителния  общ растеж  на културите  след  
периода  на третиране . Третираните  култури  се поддържат  в 
среда  на растеж  за достатъчен  период  от време , характерен  за 
всеки  избран  локус  и клетъчен  тип, за да се осигури  почти  
оптимално  фенотипно  изразяване  на индицираните  мутации . 
Мутантната  честота  се определя  чрез посяване  на известни  
количества  клетки  в среда , съдържаща  селективния  агент , за 
да се открият  мутантни  клетки , и в среда  без селективен  
агент , за да се определи  ефективността  на клониране  
(оцеляване ). След  подходящ  инкубационен  период  колониите  
се преброяват . Мутантната  честота  се получава  от броя  на 
мутантни  колонии  в селективна  среда  и броя  на колониите  в 
неселективна  среда . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 356
 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
1.4.1.  Подготовка  
1.4.1.1.  Клетки  
За настоящия  тест има в наличност  разнообразни  клетъчни  
типове , включително  и субклони  на L5171Y, СНО , СНО -АS52, 
V79 или ТК6 клетки . Типовете  клетки , използвани  в настоящия  
тест, следва  да са показали  чувствителност  към химични  
мутагени , висока  ефективност  на клониране  и стабилна  честота  
на спонтанни  мутации . Клетките  следва  да се проверят  за 
замърсяване  на микоплазмата  и ако са замърсени , не следва  да 
се използват . 
Тестът  следва  да се провежда  с предварително  определени  
чувствителност  и енергия . Броят  клетки , култури  и конце­  
нтрации  на тестваното  вещество  следва  да отразяват  тези 
дефинирани  параметри  (14). Минималният  брой  жизнеспособни  
клетки , оцеляващи  от третирането  и използвани  на всеки  етап на 
теста , следва  да се базира  на честотата  на спонтанни  мутации . 
Една  принципна  насока  е да се използва  брой  клетки , който  е 
равен  най-малко  на 10 пъти  реципрочната  стойност  на честотата  
на спонтанни  мутации . Все пак препоръчително  е да се 
използват  поне  10  6 клетки . Следва  да има съответстващи  
данни  от предишни  изследвания  за използваната  клетъчна  
система , които  да свидетелстват  за последователност  при 
провеждането  на теста . 
1.4.1.2.  Среда  и условия  за отглеждане  на културите  
Следва  да се използват  подходяща  хранителна  среда  и инкуб­  
ационни  условия  (носители  на културата , температура , конце­  
нтрация  на СО 2 и влажност  на въздуха ). Видовете  хранителна  
среда  следва  да се подберат  в съответствие  със селективните  
системи  и типа  клетки  на теста . Особено  важно  е условията  за 
отглеждане  на културите  да се подберат  така, че да осигуряват  
оптимален  растеж  на клетките  по време  на периода  на 
изразяване  и способност  за образуване  на колонии  както  за 
мутантни , така и за немутантни  клетки . 
1.4.1.3.  Приготвяне  на културите  
Размножават  се клетки  от изходни  култури , посяват  се в 
хранителна  среда  и се инкубират  при 37  o С. Преди  употребата  
им в настоящия  тест може  да се окаже  необходимо  културите  да 
се почистят  от съществуващи  преди  това мутантни  клетки . 
1.4.1.4.  Метаболична  активация  
Клетките  следва  да се експонират  на тестваното  вещество  както  
в наличието , така и в отсъствието  на подходяща  система  за 
метаболична  активация . Най-често  използваната  система  е 
постмитохондрична  фракция  (89) с добавка  на ко-фактор , приг­  
отвена  от черните  дробове  на гризачи , третирани  с ензимно  
индуциращи  реактиви , като Ароклор  1254 (15) (16) (17) (18) 
или смес  от фенобарбитон  и ß-нафтофлавон  (19) (20).  
Постмитохондричната  фракция  обикновено  се използва  с конце­  
нтрации  в обхвата  от 1 — 10 % V/V в последната  среда  на теста . 
Изборът  и състоянието  на системата  за метаболична  активация  
може  да зависи  от класа  на тествания  химикал . В някои  случаи  
би било  подходящо  да се използва  повече  от една  концентрация  
на постмитохондрична  фракция . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 357
 
Редица  разработки , включително  и създаването  на генно  
конструирани  клетъчни  линии , изразяващи  специфични  
активизиращи  ензими , могат  да осигурят  потенциал  за 
ендогенна  активация . Изборът  на клетъчни  линии  за теста  
следва  да е научно  обоснован  (напр . чрез значението  на 
изоензим  цитохром  Р450 за метаболизма  на тестваното  
вещество ). 
1.4.1.5.  Подготовка  на тестваното  вещество  
Твърдите  вещества  за теста  следва  да се разтворят  или 
суспендират  в подходящи  разтворители  или носители  и, ако е 
необходимо , да се разредят  преди  третиране  на клетките . 
Течните  вещества  за теста  могат  да се добавят  директно  или 
да се разредят  преди  третиране . Следва  да се използват  пресни  
препарати  на тестваното  вещество , освен  ако данните  за стабил­  
ността  му не показват , че може  да се съхранява . 
1.4.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.4.2.1.  Разтворител /носител  
Не следва  да съществуват  съмнения  за химическа  реакция  на 
разтворителя /носителя  с тестваното  вещество  и той следва  да е 
съвместим  с оцеляването  на клетките  и активността  на S9. Ако 
се използват  други  освен  добре  познатите  разтворители /­ 
носители , включването  им в теста  следва  да се подкрепи  от 
данни  за съвместимостта  им. Препоръчва  се, винаги  когато  е 
възможно , първо  да се разглежда  възможността  за прилагането  
на воден  разтворител /носител . При тестването  на вещества , 
нестабилни  във вода , използваните  органични  разтворители  не 
следва  да съдържат  вода . Водата  може  да се отстрани  чрез доба­  
вянето  на молекулно  сито . 
1.4.2.2.  Концентрации  на експозиция  
Измежду  критериите , които  следва  да се имат  предвид  при 
определянето  на най-високите  концентрации , са цитотоксич­  
ността , разтворимостта  в тестовата  система  и промените  в рН 
или осмотичното  налягане . 
Цитотоксичността  следва  да се определи  със и без метаболична  
активация  в главния  експеримент , като се използва  подходяща  
индикация  на клетъчната  цялост  и растеж  като относителна  
ефективност  на клониране  (оцеляване ) или относителен  общ 
растеж . Може  би ще е полезно  да се определи  цитотоксичността  
и разтворимостта  в предварителен  експеримент . 
Следва  да се използват  най-малко  четири  анализируеми  конце­  
нтрации . Там, където  се среща  цитотоксичност , тези конце­  
нтрации  следва  да покриват  обхват  от максимална  до слаба  
токсичност  или липса  на токсичност ; това обикновено  
означава , че концентрациите  следва  да се различават  с коеф­  
ициент  не повече  от 2 до √10. Ако максималната  концентрация  
е базирана  на цитотоксичност , то резултатът  следва  да е 
приблизително  10—20 % ( но не по-малко  от 10 %) относително  
оцеляване  (относителна  ефективност  на клониране ) или относ­  
ителен  общ растеж . За относително  нецитотоксични  вещества , 
максималната  тестова  концентрация  следва  да е 5 mg/ml, 5 μl/ml, 
или 1,01 М, в зависимост  от това коя е най-ниска . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 358
 
Относително  неразтворимите  вещества  следва  да се тестват  до 
или над границата  им на разтворимост  при условията  на 
отглеждане  на културата . Доказателствата  за неразтворимост  
следва  се определят  в последната  среда  на третиране , на която  
са експонирани  клетките . може  да бъде  да се определи  разт­  
воримостта  в началото  и края  на третирането , тъй като тя 
може  да се промени  в течение  на експонирането  в тестваната  
система  поради  присъствието  на клетки , 89, серум  и др. Неразт­  
воримостта  може  да се установи  с просто  око. Утайката  не 
следва  да пречи  на отчитането . 
1.4.2.3.  Контроли  
Паралелни  положителни  и отрицателни  (разтворител  или 
носител ) контроли , както  със, така и без метаболична  активация , 
следва  да се включат  във всеки  експеримент . Когато  се използва  
метаболична  активация , химикалът  за положителните  контроли  
следва  да е от такъв  вид, че да изисква  активация , за да 
произведе  мутагенна  реакция . 
Примерите  за положителни  контролни  вещества  включват : 
Състояние  на мета­  
болична  активация  Локус  Вещество  САS № Einecs № 
Отсъствие  на 
екзогенна  мета­  
болична  
активация  НРRТ Етил  метансулфонат  62-50-0 200-536-7 
Етил  нитрозокарбамид  759-73-9 212-072-2 
ТК (малки  и 
големи  
колонии ) Метил  метансулфонат  66-27-3 200-625-0 
ХРRТ Етил  метансулфонат  62-50-0 200-536-7 
Етил  нитрозокарбамид  759-73-9 212-072-2 
Наличие  на 
екзогенна  мета­  
болична  
активация  НРRТ 3-метилхолантрен  56-49-5 200-276-4 
]N-нитрозодиметиламин  62-75-9 200-549-8 
7,12-диметилбензантрацен  57-97-6 200-359-5 
ТК (малки  и 
големи  
колонии ) Циклофосфамид  50-18-0 200-015-4 
Циклофосфамид  монохидрат  6055-19-2 
Бензо [а]пирен  50-32-8 200-028-5 
3-метилхолантрен  56-49-5 200-276-5 
XPRT N- нитрозодиметиламин  (за 
високи  нива  на S-9) 62-75-9 200-549-8 
Бензо [а]пирен  50-32-8 200-028-5  
Могат  да се използват  други  подходящи  референтни  вещества  за 
положителни  контроли , напр . ако една  лаборатория  има база 
данни  от предишни  изследвания  за 5-бромо  2'-деоксиуридин  
(CAS № 59-14-3, EINECS № 200-415-9), това рефрентно  
вещество  би могло  също  да се използва . Следва  да се има 
предвид  използването  на химикали  за положителна  контрола , 
принадлежащи  към химичен  клас, когато  такива  са налични . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 359
 
Следва  да се включат  отрицателните  контроли , състоящи  се 
само  от разтворител  или носител  в средата  за третиране  и 
третирани  по същия  начин  както  опитните  групи . В допълнение  
към това следва  също  да се използват  нетретирани  контроли , 
освен  ако няма  контролни  данни  от предишни  изследвания , 
показващи , че избраният  разтворител  не причинява  делеционни  
или мутагенни  ефекти . 
1.4.3.  Процедура  
1.4.3.1.  Третиране  с тестваното  вещество  
Пролифериращи  клетки  се експонират  на въздействието  на 
тестваното  вещество  както  със, така и без метаболична  акти­  
вация . Експозицията  следва  да е за подходящ  период  от време  
(обикновено  3—6 часа е ефективният  период ). Времето  на 
експозиция  може  да обхване  един  или повече  клетъчни  цикли . 
За всяка  тествана  концентрация  може  да се използват  две или 
една  третирана  култура . Когато  се използва  по една  култура , 
броят  на концентрациите  следва  да се увеличи , за да се 
осигури  адекватен  брой  култури  за анализ  (напр . най-малко  
осем  анализируеми  концентрации ). Отрицателните  (разтворител ) 
контролни  култури  следва  да са две. 
Газообразните  или летливи  вещества  следва  да се тестват  чрез 
подходящи  методи , като например  в запечатани  носители  на 
културата  (21) (22).  
1.4.3.2.  Измерване  на оцеляването , жизнеспособността  и честотата  
на мутантите  
В края  на периода  на експозиция  клетките  се промиват  и 
култивират , за да се определи  оцеляването  и да се даде  
възможност  за изразяване  на мутантния  фенотип . Измерването  
на цитотоксичността  чрез определяне  на относителната  
ефективност  на клониране  (оцеляване ) или относителния  общ 
растеж  на културите  обикновено  започва  след  периода  на 
третиране . 
Всеки  локус  изисква  точно  определено  минимално  време  за 
почти  оптимално  изразяване  на фенотипа  на новоиндуцираните  
мутанти  (HPRT и XPRT изискват  поне  6—8 дни, а ТК — поне  
два дни). Клетките  се отглеждат  в среда  със и без селективен (и) 
агент (и) за определяне  на бройките  мутанти  и съответно  на 
ефективността  на клониране . Измерването  на жизнеспособността  
(използвано  за изчисляване  на честотата  на мутантите ) започва  в 
края  на времето  на изразяване  чрез култивиране  в блюдо  в 
неселективна  среда . 
Ако тестваното  вещество  е положително  в теста  L5178Y ТК +/- , 
сортирането  на колониите  следва  да се извърши  поне  на една  от 
тестваните  култури  (най-високата  положителна  концентрация ) и 
на отрицателните  и положителните  контроли . Ако тестваното  
вещество  е отрицателно  в теста  L5178Y ТК +/- , сортирането  на 
колониите  следва  да се извърши  на отрицателните  и положит­  
елните  контроли . В изследвания , използващи  ТК6ТК +/- , може  
също  да се направи  сортиране  на колониите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 360
 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Данните  следва  да обхващат  цитотоксичността  и жизнеспособ­  
ността , броя  на колониите  и честотите  на мутантите  за 
третираните  и контролни  култури . В случай  на положителна  
реакция  в теста  L5178Y ТК +/- колониите  се отчитат , като се 
използват  критериите  за малки  и големи  колонии  при поне  
една  концентрация  на тестваното  вещество  (най-високата  полож­  
ителна  концентрация ) и на отрицателните  и положителните  
контроли . Молекулното  и цитогенетичното  естество  на 
мутантите  както  от големите , така и от малките  колонии  е 
изследвано  в детайли  (23) (24). В теста  ТК +/- колониите  се 
отчитат  с помощта  на критериите  за колонии  с нормален  
растеж  (големи ) и бавен  растеж  (малки ) (25). Мутантните  
клетки , претърпели  най-обширното  генетично  увреждане , имат  
удължени  времена  за удвояване  и поради  това образуват  малки  
колонии . Това  увреждане  типично  варира  по мащаб  от загубите  
на целия  ген до кариотипно  видими  хромозомни  аберации . 
Индуцирането  на мутанти  на малки  колонии  се свързва  с 
химикали , индуциращи  едри  хромозомни  аберации  (26). По- 
малко  засегнатите  мутантни  клетки  растат  с темпове , подобни  
на тези на родителските  клетки  и формират  големи  колонии . 
Следва  да се посочи  оцеляването  (относителни  ефективности  на 
клониране ) или относителният  общ растеж . Честотата  на 
мутантите  следва  да се изрази  като брой  на мутиралите  клетки  
спрямо  броя  на оцеляващите  клетки . 
Посочват  се данните  за отделните  култури . Освен  това всички  
данни  се резюмират  в таблица . 
Няма  изискване  за потвърждаване  на ясна  положителна  реакция . 
Двузначните  резултати  следва  да се изяснят  чрез допълнително  
тестване , като за предпочитане  е да бъдат  изменени  условията  
на извършване  на опита . Отрицателните  резултати  следва  да се 
потвърдят  за всеки  случай  поотделно . В случаите , когато  не се 
смята  необходимо  потвърждаването  на отрицателни  резултати , 
следва  да се даде  обосновка . Няма  изискване  за потвърждаване  
на ясна  положителна  реакция . Следва  да се предвиди  изменение  
в параметрите  на изследване , за да се разширят  условията , при 
които  се прави  оценка , при последващи  опити  или двузначните  
или отрицателните  резултати . Параметрите  на изследването , 
които  биха  могли  да се изменят , обхващат  границите  на конце­  
нтрацията  и условията  на метаболична  активация . 
2.2. ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , 
като например  увеличение , свързано  с концентрацията , или 
репродуцируемо  увеличение  на честотата  на мутантите . Първо  
следва  да се разгледа  биологичната  значимост  на резултатите . 
При оценката  на резултатите  от теста  биха  могли  да се 
използват  статистически  методи . Статистическата  значимост  не 
следва  да е единственият  решаващ  фактор  за положителна  
реакция . 
Тествано  вещество , за което  резултатите  не удовлетворяват  
горните  критерии , се счита  немутагенно  в настоящата  система . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 361
 
Въпреки  че повечето  опити  дават  ясно  положителни  или отриц­  
ателни  резултати , в редки  случаи  наборът  данни  изключва  
правенето  на категорична  преценка  за активността  на тестваното  
вещество . Резултатите  могат  да останат  двузначни  или под 
въпрос , независимо  от това колко  пъти  е повторен  опитът . 
Положителните  резултати  от теста  in vitro  за клетъчни  генни  
мутации  при бозайници  показват , че тестваното  вещество  
индуцира  генни  мутации  в използваните  в теста  култивирани  
клетки  на бозайници . Най-значима  е положителната  реакция  на 
концентрация , която  е репродуцируема . Отрицателните  
резултати  показват , че при условията  на теста  тестваното  
вещество  не предизвиква  генни  мутации  в използваните  в 
теста  култивирани  клетки  на бозайници . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  следва  да включва  следната  информация : 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на носител , 
— разтворимост  и стабилност  на тестваното  вещество  в 
разтворител /носител , ако са известни . 
Клетки : 
— тип и източник  на клетки , 
— брой  клетъчни  култури , 
— брой  клетъчни  пасажи , ако е приложим , 
— методи  за поддържане  на клетъчна  култура , ако е прил­  
ожимо , 
— отсъствие  на микоплазма . 
Условия  за провеждане  на теста : 
— основна  причина  за избора  на концентрации  и броя  на 
култури , в т.ч. напр . данни  за цитотоксичността  и граници  
на разтворимост , ако са налични , 
— състав  на средите , СО 2 концентрация , 
— концентрация  на тестваното  вещество , 
— обем  на носителя  и добавеното  тествано  вещество , 
— температура  на инкубация , 
— време  на инкубация , 
— времетраене  на третирането , 
— гъстота  на клетките  по време  на третиране , 
— тип и състав  на системата  за метаболична  активация , в т.ч. 
критерии  за приемливост , 
— положителни  и отрицателни  контроли , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 362
 
— продължителност  на периода  на изразяване  (в т.ч. брой  на 
посетите  клетки  и субкултури  и графици  на подхранване , ако 
са уместни ), 
— селективни  агенти , 
— критерии  за приемане  на тестовете  за положителни , отриц­  
ателни  или двузначни , 
— използвани  методи  за преброяване  на жизнеспособните  и 
мутиралите  клетки , 
— кои дефиниции  за размера  и типа  на колониите  са взети  
предвид  (в т.ч. критерии  за „малки “ и „големи “ колонии , 
както  е уместно ). 
Резултати : 
— признаци  на токсичност , 
— признаци  на утаяване , 
— данни  за рН и осмотичното  налягане  по време  на експоз­  
ицията  към тестваното  вещество , ако са определени , 
— размер  на колониите , ако са отчетени  поне  за отрицателни  и 
положителни  контроли , 
— адекватност  на лабораторията  за откриване  на мутанти  от 
малки  колонии  със системата  L5178Y ТК +/- , когато  е 
уместно , 
— взаимоотношение  доза-реакция , където  е възможно , 
— статистически  анализи , ако има такива , 
— паралелни  отрицателни  (разтворител /носител ) и положителни  
контролни  данни , 
— отрицателни  (разтворител /носител ) и положителни  
контролни  данни  от предишни  изследвания  с обхвати , 
средни  стойности  и стандартни  отклонения , 
— честота  на мутантите . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Moore, M. M., DeMarini, D. M., DeSerres, F. J. and Tindal, 
K. R. (eds.) (1987),  Banbury Report 28; Mammalian Cell 
Mutagenesis,  Cold Spring Harbor Laboratory, New York.  
(2) Chu, E. .Y. and Malling H. V. (1968), Mammalian Cell 
Genetics. II. Chemical Induction of Specific Locus Mutations 
in Chinese Hamster Cells  In Vitro, Proc. Natl. Acad. Sci.  USA, 
61, pp. 1306—1312.  
(3) Liber, H. L. and Thilly, W. G. (1982), Mutation Assay at the 
Thymidine Kinase Locus in Diploid Human Lymphoblasts,  
Mutation Res.  94, pp. 467—485.  
(4) Moore, M. M., Harington-Brock, K., Doerr, C. L. and Dear ­
field, K. L. (1989), Differential Mutant Quantitation at the 
Mouse Lymphoma TK and CHO HGPRT Loci,  Mutagenesis,  
4, pp. 394—403.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 363
 
(5) Aaron, C. S., and Stankowski, Jr. L. F., (1989), Comparison of 
the AS52/XPRT and the CHO/HPRT AssayS: Evaluation of 
Six Drug Candidates,  Mutation Res.  223, pp. 121—128.  
(6) Aaron, C. S., Bolcsfoldi, G., Glatt, H. R., Moore, M., Nishi, 
Y., Stankowski, Jr. L. F., Theiss, J. and Thompson, E. (1994), 
Mammalian Cell Gene Mutation Assays Working Group 
Report. Report of the International Workshop on Standardi ­
sation of Genotoxicity Test Procedures.  Mutation Res.  312, 
pp. 235—239.  
(7) Scott, D., Galloway, S. M., Marshall, R. R., Ishidate, M., 
Brusick, D., Ashby, J. and Myhr, B.C. (1991), Genotoxicity Under Extreme Culture Conditions. A report from ICPEMC 
Task Group 9,  Mutation Res.  257, pp. 147—204.
 
(8) Clive, D., McCuen, R., Spector, J. F. S., Piper, C. and Mavo ­
urnin, K. H. (1983), Specific Gene Mutations in L5178Y Cells 
in Culture. A Report of the U.S. Environmental Protection 
Agency Gene-Tox Program,  Mutation Res.,  115, pp. 
225—251.  
(9) Li, A. P., Gupta, R. S., Heflich, R. H. and Wasson, J. S. 
(1988), A Review and Analysis of the Chinese Hamster 
Ovary/Hypoxanthine Guanine Phosphoribosyl Transferase System to Determine the Mutagenicity of Chemical AgentS: A Report of Phase III of the U.S. Environmental Protections 
Agency Gene-Tox Program,  Mutation Res.,  196, pp. 17—36.
 
(10) Li, A. P., Carver, J. H., Choy, W. N., Hsie, A. W., Gupta, R. 
S., Loveday, K. S., ÓNeill, J. P., Riddle, J. C, Stankowski, L. 
F. Jr. and Yang, L. L. (1987), A Guide for the Performance of 
the Chinese Hamster Ovary Cell/Hypoxanthine-Guanine Phosphoribosyl Transferase Gene Mutation Assay,  Mutation 
Res.,  189, pp. 135—141.
 
(11) Liber, H. L., Yandell, D. W. and Little, J. B. (1989), A 
Comparison of Mutation Induction at the TK and HPRT Loci in Human Lymphoblastoid CellS: Quantitative Diffe ­
rences are Due to an Additional Class of Mutations at the 
Autosomal TK Locus,  Mutation Res.,  216, pp. 9—17.
 
(12) Stankowski, L. F. Jr., Tindal,, K. R., and Hsie, A. W. (1986), 
Quantitative and Molecular Analyses of Ethyl Methanosul ­
phonate — and ICR 191-Induced Molecular Analyses of 
Ethyl Methanosulphonate — and ICR 191 Induced Mutation in AS52 Cells,  Mutation Res.,  160, pp. 133—147.
 
(13) Turner, N. T., Batson, A. G. and Clive, D. (1984), Procedure 
for the L5178Y/TK  +/- — TK  +/- Mouse Lymphoma Cell Muta ­
genicity Assay, w: Kilbey, B. J. et al (eds.) Handbook of Mutagenicity Test Procedures, Elsevier Science Publishers, 
New York, pp. 239—268.
 
(14) Arlett, C. F., Smith, D. M., Clarke, G. M., Green, M. H. L., 
Cole, J., McGregor, D. B. and Asquith S. C. (1989), 
Mammalian Cell Gene Mutation Assays Based upon Colony 
Formation, w:  Statistical Evaluation of Mutagenicity Test 
Data,  Kirkland, D. J., ed., Cambirdge University Press, pp. 
66—101.  
(15) Abbondandolo, A., Bonatti, S., Corti, G., Fiorio, R., Loprieno, 
N. and Mazzaccoro, A. (1977), Induction of 6-Thioguanine- Resistant Mutants in V79 Chinese Hamster Cells by Mouse- 
Liver Microsome- Activated Dimethylnitrosamine,  Mutation 
Res. 46, pp. 365—373.
 
(16) Ames, B. N., McCann, J. and Yamasaki, E. (1975), Methods 
for Detecting Carcinogens and Mutagens with the Salmonella/ 
Mammalian-Microsome Mutagenicity Test,  Mutation Res.  31, 
pp. 347—364.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 364
 
(17) Clive, D., Johnson, K. O., Spector, J. F. S., Batson A. G. and 
Brown M. M. M. (1979), Validation and Characterisation of 
the L5178Y/TK  +/ – Mouse Lymphoma Mutagen Assay 
System,  Mutat. Res.  59, pp. 61—108.  
(18) Maron, D. M. and Ames, B. N. (1983), Revised Methods for 
the Salmonella Mutagenicity Test,  Mutation Res.  113, pp. 
173—215.  
(19) Elliott, B. M., Combes, R. D., Elcombe, C. R., Gatehouse, D. 
G., Gibson, G. G., Mackay, J. M. and Wolf, R. C. (1992), 
Alternatives to Aroclor 1254-Induced S9 in:  In Vitro  Genoto­
xicity Assays,  Mutagenesis  7, pp. 175—177.  
(20) Matsushima, T., Sawamura, M., Hara, K. and Sugimura, T. 
(1976), A Safe Substitute for Polycholrinated Biphenyls as an Inducer of Metabolic Activation Systems, in:  In Vitro 
Metabolic Activation in Mutagenesis Testing,  de Serres, F. J., 
Fouts, J. R., Bend, J. R. and Philpot, R. M. (eds), Elsevier, North-Holland, pp. 85—88.
 
(21) Krahn, D. F., Barsky, F. C. and McCooey, K. T. (1982), 
CHO/HGPRT Mutation Assay: Evaluation of Gases and 
Volatile Liquids, in: Ticc, R. R., Costa, D. L., Schaich, K. M. (eds),  Genotoxic Effects of Airborne Agents,  New York, 
Plenum, pp. 91—103.
 
(22) Zamora, P. O., Benson, J. M., Li, A. P. and Brooks, A. L. 
(1983), Evaluation of an Exposure System Using Cells Grown 
on Collagen Gels for Detecting Highly Volatile Mutagens in 
the CHO/HGPRT Mutation Assay,  Environmental Mutage ­
nesis,  5, pp. 795—801.  
(23) Applegate, M. L., Moore, M. M., Broder, C. B., Burrell, A. 
and Hozier, J. C. (1990), Molecular Dissection of Mutations at 
the Heterozygous Thymidine Kinase Locus in Mouse Lymphoma Cells,  Proc. Natl. Acad. Sci.  USA, 87, pp. 51—55.
 
(24) Moore, M. M., Clive, D. Hozier, J. C, Howard, B. E., Batson, 
A. G., Turner, N. T. and Sawyer, J. (1985), Analysis of Trifluoronthymidine, Resistant (TFT+) Mutants of L5178Y/ ­
TK
 +/- — Mouse Lymphoma Cells,  Mutation Res.  151, pp. 
161—174.  
(25) Yandell, D. W., Dryja, T. P. and Little, J. B. (1990), Molecular 
Genetic Analysis of Recessive Mutations at a Heterozygous 
Autosomal Locus in Human Cells,  Mutation Res.  229, pp. 
89—102.  
(26) Moore, M. M. and Doerr, C. L. (1990), Comparison of Chro ­
mosome Aberration Frequency and Small Colony TK-Deficient 
Mutant Frequency in L5178Y/TK  +/- - 3.7.2C Mouse 
Lymphoma Cells, Mutagenesis, 5, pp. 609—614.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 365
 
Б.18. УВРЕЖДАНЕ  И РЕПАРАЦИЯ  НА ДНК  — НЕПЛАНИРАН  
СИНТЕЗ  НА ДНК  — КЛЕТКИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  (IN VITRO ) 
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитването  за непланиран  синтез  на ДНК  (UDS) измерва  
синтеза  за репарация  на ДНК  след  изрязване  и отстраняване  
на последователност  от ДНК , която  съдържа  участъка  с 
повреда , предизвикана  от химични  или физични  агенти . 
Изпитването  се базира  на включването  на маркиран  с тритий  
тимидин  3 H-TdR) в ДНК  на клетки  от бозайници , които  не са 
във фаза  S на клетъчния  цикъл . Навлизането  на 3 H-TdR може  да 
бъде  определено  с помощта  на авторадиография  или 
посредством  течно  сцинтилационно  броене  (LSC) на ДНК  от 
третираните  клетки . Културата  на клетките  от бозайници , 
освен  ако не се използват  първични  хепатоцити  от плъх , се 
третира  с изпитвания  агент  със и без екзогенна  система  за мета­  
болитно  активиране . UDS може  да се измерва  и в in vivo  
системи . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Изпитваните  химически  вещества  и веществата  за сравнение  
следва  да бъдат  приготвени  в средата  за растеж  или разтворени  
или суспендирани  в подходящи  носители  и после  да бъдат  
разредени  допълнително  в средата  за растеж , която  се 
използва  при изпитването . Крайната  концентрация  на носителя  
не следва  да оказва  влияние  върху  жизнеспособността  на 
клетките . 
При изпитването  могат  да се използват  първични  култури  от 
хепатоцити  на плъх , човешки  лимфоцити  или постоянни  
клетъчни  линии  (например  човешки  диплоидни  фибробласти ). 
Клетките  следва  да бъдат  подложени  на експозиция  на 
изпитваното  химическо  вещество  както  в присъствие , така и в 
отсъствие  на подходяща  система  за метаболитно  активиране . 
Условия  на изпитване  
Б р о й н а к у л т у р и т е 
За всяка  експериментална  точка  са необходими  поне  две 
клетъчни  култури  за авторадиография  и шест  култури  (или по- 
малко , ако е научно  оправдано ) за LSC UDS изпитвания . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 366
 
И з п о л з в а н е н а п о л о ж и т е л н и и о т р и ц а т е л н и 
к о н т р о л и 
Във всеки  експеримент  следва  да бъдат  включени  паралелни  
положителни  и отрицателни  (нетретирани  и/или с носител ) 
контроли  със и без метаболитно  активиране . 
Примери  за положителни  контроли  за изследване  на хепатоцити  
от плъх  са 7,12-диметилбензантрацен  (7,12-DMBA) или 2-ацет­  
иламинофлуорен  (2-AAF). При постоянни  клетъчни  линии  
пример  за положителна  контрола  е 4-нитроквинолин -N-оксид  
(4-NQO), както  за авторадиографски , така и за LSC изследвания , 
проведени  без метаболитно  активиране . N-диметилнитрозаминът  
представлява  пример  за положително  контролно  съединение , 
когато  се използват  системи  за метаболитно  активиране . 
Е к с п о з и ц и о н н и к о н ц е н т р а ц и и 
Следва  да се използват  множество  концентрации  на изпитваното  
вещество  в диапазон , който  е адекватен  за определяне  на 
отговора . Най-високата  концентрация  следва  да предизвиква  
известни  токсични  за клетката  ефекти . Относително  неразт­  
воримите  във вода  съединения  следва  да се изпитват  до 
границата  на разтворимостта  си. За лесно  разтворимите  във 
вода  нетоксични  химически  вещества  високата  концентрация  
на изпитваните  химически  вещества  следва  да се определя  за 
всеки  конкретен  случай . 
К л е т к и 
При поддържане  на културите  следва  да се използват  
подходящи  среди  за растеж , концентрация  на СО 2 , температура  
и влажност . Постоянните  клетъчни  линии  следва  да се 
проверяват  периодично  за заразяване  с Mycoplasma.  
М е т а б о л и т н о а к т и в и р а н е 
При първични  култури  от хепатоцити  не се използват  системи  за 
метаболитно  активиране . Постоянните  клетъчни  линии  и 
лимфоцитите  се подлагат  на експозиция  на изпитваното  
вещество  както  в присъствие , така и при липса  на подходяща  
система  за метаболитно  активиране . 
Процедура  
П р и г о т в я н е н а к у л т у р и 
Постоянните  клетъчни  култури  се получават  от изходни  култури  
(например  чрез трипсинизация  или отделяне ), посети  в съдове  за 
култивиране  при подходяща  плътност  и инкубирани  при 37 o С. 
Краткотрайните  култури  от хепатоцити  на плъх  се създават  чрез 
даване  възможност  на прясно  дисоциирани  в подходяща  среда  
хепатоцити  да се закрепят  към растежната  повърхност . 
Култури  от човешки  хепатоцити  се създават  с помощта  на 
подходящи  техники . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 367
 
Т р е т и р а н е н а к у л т у р и т е с и з п и т в а н о т о 
в е щ е с т в о 
Първични  хепатоцити  от плъх  
Прясно  изолирани  хепатоцити  от плъх  се третират  с 
изпитваното  вещество  в среда , съдържаща  3 H-TdR, в продъ­  
лжение  на подходящ  по продължителност  период  от време . В 
края  на третирането  от средата  се отстраняват  клетките , които  
след  това се измиват , фиксират  и изсушават . Предметните  
стъкла  се потопяват  в авторадиографска  емулсия  (алтернативено  
може  да се използва  филм  с отлепващ  се слой ), експонират  се, 
проявяват  се, оцветяват  се и се преброяват . 
Постоянни  клетъчни  линии  и лимфоцити  
Авторадиографски  техники : Клетъчните  култури  се подлагат  на 
експозиция  на изпитваното  вещество  за периоди  с подходяща  
продължителност , последвани  от третиране  с 3 H-TdR. 
Времената  зависят  от естеството  на веществото , активността  
на метаболизиращите  системи  и типа  клетки . За да се открият  
пиковете  на UDS,  3 H-TdR следва  да бъде  добавен  едновременно  
с изпитваното  вещество  или в рамките  на няколко  минути  след  
експозицията  на изпитваното  вещество . Изборът  между  тези две 
процедури  ще зависи  от възможните  взаимодействия  между  
изпитваното  вещество  и 3 H-TdR. За да се направи  разлика  
между  UDS и полуконсервативната  репликация  на ДНК , 
последната  следва  да бъде  потисната , например  чрез използване  
на среда  с дефицит  на аргинин , ниско  съдържание  на серум  или 
чрез хидроксиурея  към средата  за култивиране . 
LSC измервания  на UDS:  Преди  третиране  с изпитваното  
вещество  навлизането  на клетки  в S- фазата  следва  да бъде  
блокирано , както  е описано  по-горе. След  това клетките  следва  
да бъдат  подложени  на експозиция  на изпитваното  химическо  
вещество , както  е описано  при авторадиографията . В края  на 
инкубирането  ДНК  следва  да бъде  извлечена  от клетките  и 
следва  да се определят  общото  съдържание  на ДНК  и степента  
на включване  на 3 H-TdR.  
Следва  да се отбележи , че когото  при горепосочените  техники  
се използват  човешки  лимфоцити , потискането  на полуко­  
нсервативната  репликация  на ДНК  в нестимулирани  култури  
не е необходимо . 
Анализ  
А в т о р а д и о г р а ф с к и и з с л е д в а н и я 
При определяне  на UDS в клетки  от култура  не се броят  ядрата  
във фаза  S. Следва  да се преброят  поне  по 50 клетки  от всяка  
концентрация . Преди  преброяването  предметните  стъкла  следва  
да бъдат  кодирани . На всяко  предметно  стъкло  следва  да се 
преброят  по няколко  разделени  на голямо  разстояние  едно  от 
друго  случайни  полета . Количеството  на включения  в 
цитоплазмата  3 H-TdR следва  да бъде  определено  посредством  
преброяване  на три цитоплазмени  полета  с размер  колкото  
ядро  от всяка  преброена  клетка . 
И з м е р в а н и я с L S C  
При всяка  концентрация  и при контролите  за изследване  на 
непланирания  синтез  на ДНК  чрез измервания  с LSC следва  да 
се използва  адекватен  брой  култури . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 368
 
Всички  резултати  следва  да бъдат  потвърдени  в независим  
експеримент . 
2. ДАННИ  
Данните  следва  да бъдат  представени  в табличен  вид. 
2.1. АВТОРАДИОГРАФСКИ  ИЗСЛЕДВАНИЯ  
Степента  на включване  на 3 H-TdR в цитоплазмата  и броят  на 
гранулите , открити  в клетъчното  ядро , следва  да бъдат  
регистрирани  поотделно . 
За да се опише  разпределението  на степента  на включване  на 
3 H-TdR в цитоплазмата  и броя  на гранулите  за ядро , може  да се 
използват  средната  стойност  и стойностите  на медианата  и 
модата . 
2.2. ИЗМЕРВАНИЯ  С LSC  
За измерванията  с LSC включването  на 3 H-TdR следва  да се 
отчита  като dpm/μg ДНК . Средната  стойност  на dpm/μg ДНК  
със стандартното  отклонение  може  да се използват  за описване  
на разпределението  на включването . 
Данните  следва  да бъдат  оценени  с помощта  на подходящи  
статистически  методи . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— използваните  клетки , плътността  и броя  на пасажите  при 
третирането , броя  на клетъчните  култури , 
— методите , използвани  за поддържане  на клетъчните  култури , 
включително  средата , температурата  и концентрациите  на 
СО 2 , 
— изпитваното  вещество , носителя , концентрациите  и обос­  
новката  за избор  на концентрации , използвани  при 
изпитването , 
— подробности  за системите  за метаболитно  активиране , 
— схема  на третирането , 
— положителни  и отрицателни  контроли , 
— използваната  авторадиографска  техника , 
— процедурите , използвани  за блокиране  влизането  на клетките  
в S-фаза , 
— процедурите , използвани  за извличане  на ДНК  и за 
определяне  на общото  съдържание  на ДНК  при измерването  
с LSC,  
— когато  е възможно , връзката  доза/отговор , 
— статистическа  оценка , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 369
 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 370
 
Б.19. ИЗПИТВАНЕ  IN VITRO  ЗА ОБМЕНИ  НА СЕСТРИНСКИ  
ХРОМАТИДИ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитването  за обмени  на сестрински  хроматиди  (ЅСЕ) 
представлява  краткотрайно  изпитване  за откриване  на 
реципрочни  обмени  на ДНК  между  две сестрински  хроматиди  
в удвояваща  се хромозома . ЅСЕ представляват  обмена  на 
продукти  от репликацията  на ДНК  в предполагаеми  
хомоложни  локуси . Предполага  се, че процесът  на обмен  
включва  разкъсване  и след  това повторно  съединяване  на 
ДНК , въпреки  че е известно  малко  за молекулната  му основа . 
Откриването  на ЅСЕ изисква  средство  за диференциално  
маркиране  на сестринските  хроматиди  и това може  да бъде  
постигнато  посредством  включване  на бромодеоксиуридин  
(BrdU) за два клетъчни  цикъла  в хромозомната  ДНК . 
Клетките  на бозайниците  се подлагат  in vitro  на експозиция  на 
изпитваното  химическо  вещество  със и без екзогенна  система  за 
метаболитно  активиране  на при бозайници , ако е необходимо , и 
се култивират  в продължение  на два цикъла  на репликация  в 
среда , съдържаща  BrdU. След  третиране  на клетките  със 
средство , потискащо  делителното  вретено  (например  колхицин ), 
за да се натрупат  клетки  в подобен  на метафаза  етап от митозата  
(с-метафаза ), те се отлепват  и от хромозомите  се приготвят  
препарати . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
— При изпитването  могат  да се използват  първични  култури , 
(човешки  лимфоцити ) или постоянни  клетъчни  линии  
(например  яйчникови  клетки  от китайски  хамстер ). 
Клетъчните  линии  трябва  да се проверяват  за заразяване  с 
Мусор lаѕта . 
— Трябва  да се използват  подходящи  среди  за култивиране  и 
условия  за инкубиране  (т.е. температура , съдове  за 
култивиране , концентрации  на СО 2 и влажност ). 
— Изпитваните  вещества  могат  да бъдат  приготвени  в средите  
за култивиране  или да бъдат  разтворени  или суспендирани  в 
подходящи  носители  преди  третирането  на клетките . 
Крайната  концентрация  на носителя  в системата  за 
култивиране  не трябва  да оказва  значително  влияние  върху  
жизнеспособността  или скоростта  на растеж  на клетките  и 
ефектите  върху  честотата  на обмена  на сестрински  
хроматиди  трябва  да бъде  мониториран  посредством  
контрол  за разтворителя . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 371
 
— Клетките  трябва  да бъдат  подложени  на експозиция  на 
изпитваното  вещество  както  в присъствие , така и в 
отсъствие  на екзогенна  система  за метаболитно  активиране  
при бозайници . Алтернативно , когато  се използват  клетки  с 
вътрешна  метаболитна  активност , скоростта  и естеството  на 
активността  трябва  да бъдат  подходящи  за изпитвания  клас 
химически  вещества . 
Условия  на изпитване  
Б р о й н а к у л т у р и т е 
За всяка  експериментална  точка  трябва  да се използват  най- 
малко  по две култури . 
И з п о л з в а н е н а п о л о ж и т е л н и и о т р и ц а т е л н и 
к о н т р о л и 
Във всеки  експеримент  трябва  да бъдат  включени  положителни  
контроли , като се използва  както  пряко  действащо  съединение , 
така и съединение , което  изисква  метаболитно  активиране . 
Трябва  да се използват  и контроли  за носителя . 
Следват  примери  за вещества , които  могат  да бъдат  използвани  
като положителни  контроли : 
— съединение  с пряко  действие : 
— етилметансулфонат , 
— съединение  с непряко  действие : 
— циклофосфамид . 
Когато  е целесъобразно , може  да се включи  допълнителна  
положителна  контрола  със същия  клас химически  вещества , 
както  изпитваното . 
Е к с п о з и ц и о н н и к о н ц е н т р а ц и и 
Трябва  да се използват  поне  три концентрации , които  са 
адекватно  разделени  една  от друга . Най-високата  концентрация  
трябва  да предизвиква  значителен  токсичен  ефект , но все пак 
трябва  да дава възможност  за осъществяването  на адекватна  
клетъчна  репликация . Относително  неразтворимите  във вода  
вещества  трябва  да се изследват  до границата  на разтворимостта  
си, като се използват  подходящи  процедури . За лесно  разт­  
воримите  във вода  нетоксични  вещества  високата  изпитвана  
концентрация  трябва  да се определя  за всеки  конкретен  случай . 
Процедура  
П р и г о т в я н е н а к у л т у р и 
Постоянните  клетъчни  култури  се получават  от изходни  култури  
(например  чрез трипсинизиране  или отделяне ), посети  в съдове  
за култивиране  при подходяща  плътност  и инкубирани  при 37  
o С. За еднослойните  култури  броят  на клетките  за съд за 
култивиране  трябва  да бъде  коригиран  така, че културите  да 
не се сливат  над 50 % в момента  на отлепват . Алтернативно , 
клетките  могат  да бъдат  използвани  в суспензионна  култура . 
Културите  от човешки  лимфоцити  се получават  от 
хепаринизирана  кръв , като се използват  подходящи  техники  и 
се инкубират  при 37  o С. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 372
 
Т р е т и р а н е 
Клетките  в експоненциален  стадий  на растеж  се подлагат  на 
експозиция  на изпитваното  вещество  за период  с подходяща  
продължителност . В повечето  случаи  един  до два часа могат  
да бъдат  ефективни , но в определени  случаи  продължителността  
на третирането  може  да бъде  удължена  до два пълни  клетъчни  
цикъла . Клетките  без достатъчна  вътрешна  метаболитна  
активност  трябва  да бъдат  подложени  на експозиция  на 
изпитваното  химическо  вещество  както  в присъствие , така и в 
отсъствие  на подходяща  система  за метаболитно  активиране . В 
края  на експозицията  клетките  се измиват  напълно  от 
изпитваното  вещество  и се култивират  в продължение  на два 
цикъла  на репликация  в присъствието  на ВrdU. Като  
алтернативна  процедура  клетките  могат  да бъдат  подложени  на 
експозиция  едновременно  на изпитваното  химическо  вещество  и 
на ВrdU в продължение  на пълното  време  на култивиране  на два 
клетъчни  цикъла . 
Културите  от човешки  лимфоцити  се третират , когато  се 
намират  в полусинхронно  състояние  
Клетките  се анализират  при второто  им деление  след  
третирането , като най-чувствителните  етапи  от клетъчния  
цикъл  трябва  да бъдат  подложени  на експозиция  на химическото  
вещество . С всички  култури , към които  се добавя  ВrdU, трябва  
да се работи  на тъмно  или при матова  светлина  от лампи  с 
нажежени  жички  до отлепването  на клетките , за да се намали  
до минимум  фотолизата  на съдържащата  ВrdU ДНК . 
О т л е п в а н е н а к л е т к и 
Клетъчните  култури  се третират  с инхибитори  на делителното  
вретено  (например  колхицин ) един  до четири  часа преди  
отлепването . Всяка  култура  се отлепва  и обработва  поотделно  
за приготвяне  на хромозоми . 
П р и г о т в я н е и о ц в е т я в а н е н а х р о м о з о м и 
Хромозомните  препарати  се приготвят  с помощта  на стандартни  
цитогенетични  техники . Оцветяването  на предметните  стъкла , за 
да се демонстрират  SCEs може  да се направи  с помощта  на 
няколко  техники  (например  метод  с флуоресценция  плюс  
Giemsa).  
А н а л и з 
Броят  на анализираните  клетки  трябва  да се базира  на 
спонтанната  честота  на ЅСЕ в контролата . Обикновено  за 
ЅСЕs се анализират  най-малко  25 добре  разгърнати  метафази  
за култура . Преди  анализа  предметните  стъкла  се кодират . При 
човешки  лимфоцити  се анализират  само  метафази , които  
съдържат  46 центромера . При постоянни  клетъчни  линии  се 
анализират  само  метафази , които  съдържат  ± 2 от модалния  
брой . Трябва  да се посочи  дали  центромерното  превключване  
на маркера  се брои  за ЅСЕ или не. Резултатите  трябва  да 
бъдат  потвърдени  в независим  експеримент . 
2. ДАННИ  
Данните  трябва  да бъдат  представени  в табличен  вид. За всички  
третирани  и контролни  култури  поотделно  трябва  да се дадат  
броят  на обмените  на сестрински  хроматиди  във всяка  метафаза  
и броят  на обмените  на сестрински  хроматиди  за хромозома  във 
всяка  метафаза . 
Данните  трябва  да бъдат  оценени  с помощта  на подходящи  
статистически  методи . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 373
 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— използваните  клетки , методите  за поддържане  на клетъчната  
култура , 
— условия  на изпитване : състав  на средите , концентрация  на 
СО 2 , концентрация  на изпитваното  вещество , използван  
носител , температура  на инкубиране , продължителност  на 
третирането , използван  инхибитор  на делителното  вретено , 
неговата  концентрация  и продължителността  на третирането  
с него , тип на използваната  система  за метаболитно  
активиране , положителни  и отрицателни  контроли , 
— брой  на клетъчните  култури  за една  експериментална  точка , 
— подробности  за техниката , използвана  за приготвяне  на 
предметни  стъкла , 
— брой  на анализираните  метафази  (данните  се дават  поотделно  
за всяка  култура ), 
— среден  брой  ЅСЕ за клетка  и за хромозома  (данните  се дават  
поотделно  за всяка  култура ), 
— критерии  за отчитане  на ЅСЕ, 
— обосновка  за избора  на доза, 
— когато  е необходимо , връзката  доза/отговор , 
— статистическа  оценка , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите . 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 374
 
Б.20. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ПОЛОВО  СВЪРЗАНА  РЕЦЕСИВНА  
ЛЕТАЛНОСТ  ПРИ  DROSOPHILA MELANOGASTER  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИПИ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитването  за полово  свързана  леталност  (SLRL) при 
Drosophila те1апоgaster  открива  появата  на мутации , точкови  
мутации  и малки  делеции  в зародишната  линия  на насекомото . 
Това  изпитване  представлява  метод  за изследване  за прави  
мутации , с който  може  да се направи  пресяващо  изпитване  за 
мутации  при около  800 локуса  в X-хромозомата , като това 
представлява  около  80 % от всички  локуси  в Х-хромозомата . 
X-хромозомата  представлява  около  една  пета от целия  
хаплоиден  геном . 
Мутациите  в Х-хромозомата  на Drosophila те1апоgaster  са 
фенотипно  изявени  при мъжките  индивиди , които  са носители  
на мутантния  ген. Когато  мутацията  е летална  в хомозиготно  
състояние , за присъствието  ѝ се съди  по липсата  на единия  от 
двата  класа  мъжко  потомство , които  нормално  се получават  от 
хетерозиготно  женско  насекомо . При изпитването  SLRL се 
използват  тези факти  с помощта  на специално  маркирани  и 
подредени  хромозоми . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
И з т о ч н и ц и 
Могат  да се използват  мъжки  насекоми  от добре  дефинирани  
източници  на насекоми  от див тип и женски  от източник  на 
вида  Muller-5. Могат  да се използват  и други  съответно  
маркирани  източници  на женски  насекоми  с множество  
инвертирани  Х-хромозоми . 
И з п и т в а н о в е щ е с т в о 
Изпитваните  вещества  трябва  да бъдат  разтворени  във вода . 
Веществата , които  са неразтворими  във вода , могат  да бъдат  
разтворени  или суспендирани  в подходящи  носители  
(например  смес  от етанол  и Тween-60 или 80), а след  това да 
бъдат  разтворени  във вода  или физиологичен  разтвор  преди  
прилагането . Трябва  да се избягва  използването  на диметилсул­  
фоксид  като носител . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 375
 
Б р о й н а ж и в о т н и т е 
Изпитването  трябва  да бъде  проектирано  с предварително  
определена  чувствителност  и възможности . Наблюдаваната  
честота  на спонтанните  мутации  при съответната  контрола  ще 
окаже  силно  влияние  върху  броя  на третираните  хромозоми , 
които  трябва  да бъдат  анализирани . 
Н а ч и н н а п р и л а г а н е 
Експозицията  може  да бъде  орална , чрез инжектиране  или чрез 
експозиция  на газове  или пари . Подхранване  с изпитваното  
вещество  може  да се направи  със захарен  разтвор . Когато  е 
необходимо , веществата  могат  да бъдат  разтворени  в 0,7 % 
разтвор  на NaCl и да бъдат  инжектирани  в гръдния  кош или 
корема . 
И з п о л з в а н е н а о т р и ц а т е л н и и п о л о ж и т е л н и 
к о н т р о л и 
Трябва  да бъдат  включени  отрицателни  (за носителя ) и полож­  
ителни  контроли . Обаче  ако съществуват  подходящи  
исторически  контролни  данни , паралелни  контроли  не са необ­  
ходими . 
Н и в а н а е к с п о з и ц и я 
Трябва  да се използват  три нива  на експозиция . За 
предварителна  оценка  може  да се използва  едно  ниво  на 
експозиция  на изпитваното  вещество , като това ниво  
представлява  максималната  поносима  концентрация  или 
нивото , което  води  до някакви  признаци  на токсичност . За 
нетоксичните  вещества , трябва  да се използва  експозиция  на 
максималната  възможна  концентрация . 
П р о ц е д у р а 
Мъжките  насекоми  див тип (на възраст  три до пет дни) се 
третират  с изпитваното  вещество  и се чифтосват  поотделно  с 
по-голям  брой  девствени  женски  насекоми  от вида  Muller-5 
или от друг  подходящо  маркиран  (с множество  инвертирани  
Х-хромозоми ) вид. Женските  се заместват  с нови  девствени  
женски  насекоми  на всеки  два до три дни, за да се покрие  
целият  цикъл  на зародишните  клетки . Потомството  на тези 
женски  се оценява  за леталност , съответстваща  на ефектите  
върху  зрялата  сперма , сперматидите  от средна  или късна  фаза , 
ранните  сперматиди , сперматоцитите  и сперматогониите  по 
време  на третирането . 
Хетерозиготните  женски  насекоми  от поколението  F 1 от горните  
кръстосвания  се чифтосват  поотделно  (т.е. една  женска  за 
флакон ) със своите  братя . В поколението  F 2 всяка  култура  се 
отчита  за липса  на мъжки  насекоми  от див тип. Ако изглежда , 
че една  култура  е възникнала  от женско  насекомо  от поколение  
F 1, което  носи  летален  признак  в родителската  Х-хромозома  (т.е. 
не се наблюдават  мъжки  насекоми  с третираната  хромозома ), 
дъщерите  на тази женска  със същия  генотип  трябва  да бъдат  
изследвани , за да се уверим , че леталният  признак  се повтаря  
в следващото  поколение . 
2. ДАННИ  
Данните  трябва  да бъдат  представени  в табличен  вид, за да бъде  
показан  броят  на изследваните  Х-хромозоми , броят  на безп­  
лодните  мъжки  насекоми  и броят  на хромозомите  с летален  
признак  при всяка  експозиционна  концентрация  и за всяко  чифт­  
осване  на всяко  третирано  мъжко  насекомо . Трябва  да бъде  
даден  броят  на клъстерите . Тези  резултати  трябва  да бъдат  
потвърдени  в отделен  експеримент . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 376
 
За оценка  на изпитванията  за полово  свързана  леталност  трябва  
да се използват  подходящи  статистически  методи . Образуването  
на клъстери  от рецесивни  летални  признаци , произхождащи  от 
едно  мъжко  насекомо , трябва  да се вземат  предвид  и да се 
оценят  с подходящ  статистически  метод . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— източник : използваните  източници /видове  и породи  
Drosophila,  възрастта  на насекомите , броят  на третираните  
мъжки  насекоми , броят  на стерилните  мъжки  насекоми , 
броят  на постоянните  култури  от поколение  F 2 , броят  на 
културите  F 2 без потомство , броят  на хромозомите , носещи  
летален  признак , открити  на всеки  стадий  от развитието  на 
зародишните  клетки , 
— критериите  за определяне  размера  на третираните  групи , 
— условия  на изпитване : подробно  описание  на схемата  за 
третиране  и вземане  на проби , нивата  на експозиция , 
данните  за токсичността , ако е необходимо , отрицателните  
(за разтворителя ) и положителните  контроли , 
— критерии  за отчитане  на леталните  мутации , 
— връзката  контакт /ефект , когато  е възможно , 
— оценка  на данните , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите . 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 377
 
Б.21. ИЗПИТВАНИЯ  IN VITRO  ЗА ТРАНСФОРМАЦИИ  В 
КЛЕТКИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
За откриване  на фенотипни  изменения  in vitro,  предизвикани  от 
химични  вещества , свързани  с in vivo  злокачествена  транс­  
формация , могат  да бъдат  използвани  системи  за култивиране  
на клетки  от бозайници . Често  използваните  клетки  са СЗН 10T  1/­
2 , 3Т3, ЅНЕ , плъх  на Fisher и при изпитванията  се разчита  на 
измененията  в клетъчната  морфология , образуването  на огнища  
и закрепването  в полутвърд  агар. Съществуват  по-рядко  
използвани  системи , които  откриват  други  физиологични  и 
морфологични  изменения  в клетките  след  експозиция  на 
канцерогенни  химически  вещества . Никоя  от изпитваните  in 
vitro  крайни  точки  няма  установена  механистична  връзка  с 
рака. Някои  от изпитваните  системи  могат  да долавят  туморни  
промотори . Клетъчната  токсичност  може  да се определя  чрез 
измерване  на ефекта  на изпитвания  материал  върху  способ­  
ността  за образуване  на колонии  (ефективност  на клониране ) 
или скоростта  на растеж  на културите . За да се измери  
клетъчната  токсичност , трябва  да се установи  дали  експозицията  
на изпитваното  химическо  вещество  е свързано  с токсик­  
ологични  ефекти , но не може  да се използва  за изчисляване  на 
честотата  на трансформациите  при всички  изпитвания , защото  
някои  могат  да включват  продължително  инкубиране  и/или 
повторно  посяване /пресяване . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
К л е т к и 
В зависимост  от използваното  трансформационно  изпитване  
съществуват  разнообразни  клетъчни  линии  или първични  
клетки . Изследователят  трябва  да бъде  сигурен , че всички  
клетки  при провежданото  изпитване  демонстрират  подходящи  
фенотипни  изменения  след  експозиция  на известни  канцерогени  
и че изпитването  в лабораторията  на изследователя  е с доказана  
и документирана  валидност  и надеждност . 
С р е д а 
Трябва  да е използват  среди  и експериментални  условия , които  
са подходящи  за използваното  трансформационно  изпитване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 378
 
И з п и т в а н о в е щ е с т в о 
Изпитваните  вещества  могат  да бъдат  приготвени  в средите  за 
култивиране  или да бъдат  разтворени  или суспендирани  в 
подходящи  носители  преди  третирането  на клетките . Крайната  
концентрация  на носителя  в системата  за култивиране  не трябва  
да оказва  влияние  върху  жизнеспособността , скоростта  на 
растеж  на клетките  или честотата  на трансформациите . 
М е т а б о л и т н о а к т и в и р а н е 
Клетките  трябва  да бъдат  подложени  на експозиция  на 
изпитваното  вещество  както  в присъствие , така и в отсъствие  
на подходяща  система  за метаболитно  активиране . 
Алтернативно , когато  се използват  клетки , които  притежават  
вътрешна  метаболитна  активност , трябва  да бъде  известно , че 
естеството  на активността  е подходящо  за изпитвания  клас 
химически  вещества . 
Условия  на изпитване  
И з п о л з в а н е н а о т р и ц а т е л н и и п о л о ж и т е л н и 
к о н т р о л и 
Във всеки  експеримент  трябва  да бъдат  включени  положителни  
контроли , като се използва  както  пряко  действащо  съединение , 
така и съединение , което  изисква  метаболитно  активиране . 
Трябва  да се използват  и отрицателни  контроли  (за носителя ). 
Следват  примери  за вещества , които  могат  да бъдат  използвани  
като положителни  контроли : 
— Пряко  действащи  химически  вещества : 
— етилметансулфонат , 
— β-пропиолактон , 
— Съединения , изискващи  метаболитно  активиране : 
— 2-ацетиламинофлуорен , 
— 4-диметиламиноазобензен , 
— 7,12-диметилбензантрацен . 
Когато  е целесъобразно , трябва  да се включи  допълнителна  
положителна  контрола  със същия  химически  клас, както  
изпитваното  съединение . 
Е к с п о з и ц и о н н и к о н ц е н т р а ц и и 
Трябва  да се използват  няколко  концентрации  на изпитваното  
вещество . Тези  концентрации  трябва  да предизвикат  токсичен  
ефект , свързан  с концентрацията , като най-високата  конце­  
нтрация  води  до ниско  ниво  на преживяемост , а преживяемостта  
при най-ниската  концентрация  е приблизително  същата , както  
при отрицателната  контрола . Относително  неразтворимите  във 
вода  вещества  трябва  да се изпитват  до границата  на разт­  
воримостта  им, като се използват  подходящи  процедури . За 
лесно  разтворимите  във вода  нетоксични  вещества  високата  
изпитвана  концентрация  трябва  да се определя  за всеки  
конкретен  случай . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 379
 
Процедура  
Клетките  трябва  да бъдат  подложени  на експозиция  с 
подходяща  продължителност  в зависимост  от използваната  
експериментална  система , а това може  да включва  повторно  
дозиране , придружено  с промяна  на средата  (и, ако е необ­  
ходимо , прясна  смес  за метаболитно  активиране ), ако експоз­  
ицията  е продължителна . Клетките  без достатъчна  вътрешна  
метаболитна  активност  трябва  да бъдат  подложени  на 
експозиция  на изпитваното  вещество  както  в присъствие , така 
и в отсъствие  на подходяща  система  за метаболитно  активиране . 
В края  на експозицията  клетките  се промиват  напълно  от 
изпитваното  вещество  и се култивират  при условия , които  са 
подходящи  за появата  на трансформирания  фенотип , който  се 
мониторира , и се определя  честотата  на трансформацията . 
Всички  резултати  се потвърждават  в независим  експеримент . 
2. ДАННИ  
Данните  следва  да бъдат  представени  в табличен  вид и могат  да 
бъдат  в различна  форма  според  използваното  изпитване , 
например  брой  на петриевите  панички , положителни  петриеви  
панички  или брой  на трансформираните  клетки . Когато  е 
целесъобразно , преживяемостта  следва  да се изрази  като 
процент  от контролните  нива , а честотата  на трансформациите  
да се изрази  за брой  преживели  клетки . Данните  следва  да бъдат  
оценени  с помощта  на подходящи  статистически  методи . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— използван  тип клетки , брой  на клетъчните  култури , методи  
за поддържане  на клетъчните  култури , 
— условия  на изпитване , концентрация  на изпитваното  
вещество , използван  носител , времето  на инкубиране , продъ­  
лжителност  и честота  на третирането , плътност  на клетките  
по време  на третирането , тип на използваната  екзогенна  
система  за метаболитно  активиране , положителни  и отриц­  
ателни  контролни  групи , спецификация  на мониторирания  
фенотип , използвана  селективна  система  (ако е необходимо ), 
обосновка  за избор  на дозата , 
— използван  метод  за пресмятане  броя  на жизнеспособните  и 
трансформираните  клетки , 
— статистическа  оценка , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите , 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
4. ПОЗОВАВАНИЯ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 380
 
Б.22. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ДОМИНАНТНА  ЛЕТАЛНОСТ  ПРИ  
ГРИЗАЧИ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Доминантната  леталност  предизвиква  ембрионална  или фетална  
смърт . Предизвикването  на доминантна  леталност  чрез контакт  с 
химично  вещество  показва , че веществото  е оказало  влияние  
върху  зародишната  тъкан  на изпитвания  вид. Общоприето  е, 
че доминантната  леталност  се дължи  на увреждане  на хромо­  
зомите  (структурни  или бройни  аномалии ). Ембрионалната  
смърт , ако женските  индивиди  са третирани , може  да бъде  и в 
резултат  на токсични  ефекти . 
Обикновено  мъжките  животни  се подлагат  на експозиция  на 
изпитваното  съединение  и се чифтосват  с нетретирани  
девствени  женски  индивиди . Различните  стадии  на развитието  
на зародишните  клетки  могат  да бъдат  изпитвани  поотделно  с 
помощта  на последователни  чифтосвания . Нарастването  на броя  
на мъртвите  имплантирани  зародиши  за женски  индивид  в 
третираната  група  в сравнение  с броя  на мъртвите  импла­  
нтирани  зародиши  за женски  индивид  в контролната  група  
отразява  постимплантационната  загуба . Предимплантационната  
загуба  може  да бъде  оценена  въз основа  на броя  на жълтите  
тела или чрез сравняване  на общия  брой  имплантирани  
зародиши  за женски  индивид  в третираната  и контролната  
група . Общата  доминантна  леталност  представлява  сумата  от 
пред - и постимплантационната  загуба . Изчисляването  на 
общата  доминантна  леталност  става  чрез сравняване  на броя  
живи  имплантирани  зародиши  за женски  индивид  в експериме­  
нталната  група  и броя  на живите  имплантирани  зародиши  за 
женски  индивид  в контролната  група . Намаляването  на броя  
на имплантираните  зародиши  през определени  интервали  може  
да се дължи  на убиване  на клетки  (т.е. на сперматоцити  и/или 
сперматоонии ). 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Когато  е възможно , изпитваните  вещества  следва  да бъдат  разт­  
ворени  или суспендирани  в изотоничен  физиологичен  разтвор . 
Неразтворимите  във вода  химически  вещества  могат  да бъдат  
разтворени  или суспендирани  в подходящи  носители . 
Използваният  носител  не следва  да оказва  влияние  върху  
изпитваното  химическо  вещество , нито  да предизвиква  
токсични  ефекти . Следва  да се използват  прясно  приготвени  
препарати  от изпитваните  химически  вещества . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 381
 
Условия  на изпитване  
Н а ч и н н а п р и л а г а н е 
Обикновено  изпитваното  съединение  следва  да се приложи  
еднократно . Въз основа  на токсикологичната  информация  
може  да се използва  схема  за многократно  третиране . 
Обичайните  начини  на прилагане  са чрез орално  интубиране  
или интраперитонеално  инжектиране . Може  да са целесъобразни  
други  начини  на прилагане . 
Е к с п е р и м е н т а л н и ж и в о т н и 
Като  експериментални  видове  се препоръчват  плъхове  или 
мишки . Здрави , напълно  полово  съзрели  животни  се избират  
по случаен  признак  и се разпределят  в третирана  и контролна  
група . 
Б р о й и п о л 
Следва  да се използва  адекватен  брой  третирани  мъжки  
индивиди , като се вземат  предвид  спонтанните  колебания  в 
оценяваната  биологична  характеристика . Избраният  брой  
следва  да се базира  на предварително  определената  чувствит­  
елност  на откриването  и възможностите . Например  при 
типично  изпитване  броят  на мъжките  индивиди  във всяка  
дозирана  група  следва  да бъде  достатъчен , за да се осигурят  
между  30 и 50 бременни  женски  индивиди  за чифтосване . 
И з п о л з в а н е н а о т р и ц а т е л н и и п о л о ж и т е л н и 
к о н т р о л и 
Обикновено  във всеки  експеримент  следва  да се включат  
паралелни  положителни  и отрицателни  (за носителя ) контроли . 
Когато  съществуват  приемливи  положителни  контролни  
резултати  от наскоро  проведени  в същата  лаборатория  
експерименти , тези резултати  могат  да бъдат  използвани  
вместо  паралелна  положителна  контрола . Положителните  
контролни  вещества  следва  да се използват  при подходяща  
ниска  доза (например  метил  метансулфонат  (ММS) интраперит­  
онеално  в доза 10 mg/kg), за да се демонстрира  чувствит­  
елността  на изпитването . 
Н и в а н а д о з и р а н е 
Нормално  следва  да се използват  три нива  на дозиране . 
Високата  доза следва  да предизвиква  признаци  на токсичност  
или намалена  плодовитост  при третираните  животни . В 
определени  случаи  може  да е достатъчно  едно -единствено  
ниво  на дозиране . 
Г р а н и ч н о и з п и т в а н е 
Нетоксичните  вещества  следва  да бъдат  изпитвани  при 5 g/kg 
при еднократно  прилагане  и при 1 g/kg на ден при многократно  
прилагане . 
Процедура  
Съществуват  няколко  схеми  за третиране . Най-широко  се 
прилага  еднократното  прилагане  на изпитваното  вещество . 
Могат  да се използват  други  схеми  за третиране . 
Отделните  мъжки  индивиди  се чифтосват  последователно  с едно  
или две нетретирани  девствени  женски  животни  на подходящи  
интервали  след  третирането . Женските  индивиди  следва  да 
бъдат  оставени  с мъжките  животни  в продължение  поне  на 
един  цикъл  на разгонване  или докато  се осъществи  чифтосване , 
което  се определя  по наличието  на сперма  във влагалището  или 
на вагинална  запушалка . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 382
 
Броят  на чифтосванията  след  третирането  зависи  от схемата  на 
третиране  и следва  да осигури  вземане  на проби  от всички  
стадии  на развитие  на зародишните  клетки . 
Женските  индивиди  се пожертват  през втората  половина  на 
бременността  и съдържанието  на матката  се изследва , за да се 
определи  броят  на мъртвите  и живите  имплантирани  зародиши . 
Могат  да се изследват  яйчниците , за да се определи  броят  на 
жълтите  тела. 
2. ДАННИ  
Данните  следва  да бъдат  представени  в табличен  вид, за да 
покажат  броя  на мъжките  индивиди , броя  на бременните  
женски  и броя  на женските  животни , които  не са бременни . 
Поотделно  следва  да се отчетат  резултатите  от всяко  чифт­  
осване , включително  идентичността  на всеки  мъжки  и женски  
индивид . За всеки  женски  индивид  следва  да се регистрират  
седмицата  на чифтосването , нивото  на дозиране , получено  от 
мъжките , честотата  на живите  имплантирани  зародиши  и на 
мъртвите  имплантирани  зародиши . 
Изчисляването  на общата  доминантна  леталност  се базира  на 
сравняване  на броя  живи  имплантирани  зародиши  за женски  
индивид  в експерименталната  група  към броя  на живите  импла­  
нтирани  зародиши  за женски  индивид  в контролната  група . 
Анализира  се съотношението  на живите  към мъртвите  импла­  
нтирани  зародиши  от третираната  група , сравнено  със същото  
съотношение  от контролната  група , за да се отбележи  пост­  
имплантационната  загуба . 
Данните  се регистрират  като ранни  и късни  смъртни  случаи , 
като от таблиците  това следва  да става  ясно . Ако се оценява  
предимплантационната  загуба , тя следва  да бъде  съобщена . 
Предимплантационната  загуба  може  да бъде  изчислена  като 
несъответствие  между  броя  на жълтите  тела и броя  на импла­  
нтираните  зародиши  или като намаляване  на средния  брой  
имплантирани  зародиши  за матка  в сравнение  с контролните  
чифтосвания . 
Данните  се оценяват  с помощта  на подходящи  статистически  
методи . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— вид, порода , възраст  и тегло  на използваните  животни , броя  
на животните  от всеки  пол в експерименталната  и 
контролната  група , 
— изпитваното  вещество , носителя , изследваните  нива  на 
дозиране  и обосновката  за избор  на доза, отрицателните  и 
положителните  контроли , данните  за токсичността , 
— начина  и схемата  на третиране , 
— схемата  на чифтосване , 
— използвания  метод  за определяне  дали  е осъществено  чифт­  
осване , 
— времето  на пожертване , 
— критериите  за отчитане  на доминантната  леталност , 
— когато  е необходимо , връзката  доза/отговор , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 383
 
— статистическа  оценка , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите , 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 384
 
Б.23. ТЕСТ  ЗА СПЕРМАТОГОНИАЛНИ  ХРОМОЗОМНИ  
АБЕРАЦИИ  ПРИ  БОЗАЙНИЦИ  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е изцяло  подобен  на теста  за спермат­  
огониални  хромозомни  аберации  при бозайници  на ОECD ТG 
483 от 1997 г. 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на теста  in vivo  за сперматогониални  хромозомни  
аберации  при бозайници  е да се идентифицират  веществата , 
причиняващи  структурни  хромозомни  аберации  в сперматогони­  
алните  клетки  на бозайници  (1) (2) (3) (4) (5). Структурните  
аберации  могат  да бъдат  два типа : хромозомни  и хроматидни . 
При повечето  химични  мутагени  индуцираните  аберации  са от 
хроматиден  тип, но се срещат  също  и аберации  от хоромозомен  
тип. Настоящият  метод  не е предназначен  да измерва  геномни  
аберации  и не се използва  обикновено  за тази цел. Хромо­  
зомните  мутации  и свързаните  с тях събития  са причината  за 
много  генетични  болести  при човека  
Настоящият  тест измерва  хромозомните  събития  в спермат­  
огониалните  зародишни  клетки  и следователно  от него  се 
очаква  да предсказва  индуцирането  на унаследяеми  мутации  в 
зародишни  клетки . 
В настоящия  тест се използват  обикновено  гризачи . Този  
цитогенетичен  тест in vivo  открива  хромозомни  аберации  в 
сперматогониални  митози . Други  прицелни  клетки  на са обект  
на настоящия  метод . 
За да се открият  аберации  от хроматиден  тип в спермат­  
огониални  клетки , следва  да се изследва  първото  митотично  
клетъчно  деление  след  третиране . преди  тези увреждания  да се 
загубят  в следващите  клетъчни  деления . Допълнителна  
информация  от третирани  сперматогониални  стволови  клетки  
може  да се получи  чрез мейотичен  хромозомен  анализ  за 
аберации  от хромозомен  тип на диакинезисна  метафаза  I, 
когато  третираните  клетки  стават  сперматоцити . 
Настоящият  тест in vivo  е предназначен  да изследва  дали  
мутагените  на соматични  клетки  са също  така активни  в 
зародишни  клетки . Освен  това сперматогониалният  тест е от 
значение  за оценката  на опасността  от това, че позволява  разг­  
леждането  на фактори  като in vivo  метаболизма , фармакокин­  
етиката  и процесите  на ДНК  репарация . 
В тестиса  съществува  редица  генерации  сперматогони  със 
спектър  на чувствителност  към химично  третиране . Следов­  
ателно  откритите  аберации  представляват  съвкупна  реакция  на 
третираните  популации  сперматогониални  клетки , като преобла­  
даващи  са по-многобройните  диференцирани  сперматогониални  
клетки . В зависимост  от положението  им в границите  на тестиса  
различните  генерации  сперматогони  биха  могли  или не да бъдат  
експонирани  на общото  кръвообращение  поради  физическата  и 
физиологичната  клетъчна  бариера  на Сертоли  и бариерата  кръв - 
тестис . 
Ако има доказателства , че тестваното  вещество  или реактивен  
метаболит  няма  да достигне  до прицелната  тъкан , не е 
подходящо  да се използва  настоящият  тест. 
Вижте  също  Общо  въведение , част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 385
 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Хроматиден  тип аберация : структурно  увреждане  на хромо­  
зомата , изразяващо  се в скъсване  на единични  хроматиди  или 
скъсване  и повторно  съединяване  между  хроматиди . 
Хромозомен  тип аберация : структурно  увреждане  на хромо­  
зомата , изразяващо  се в скъсване  или скъсване  и повторно  
съединяване  на двата  хроматида  на една  и съща  страна . 
Празнина : ахроматично  увреждане , по-малко  от ширината  на 
един  хроматид  с минимално  отклонение  в реда  на хром­  
атида (ите). 
Геномна  аберация : промяна  в броя  на хромозоми  в сравнение  с 
нормалния  брой , характерен  за използваните  животни . 
Полиплоидия : множимо  на хаплоидния  брой  хромозоми  (n), 
различно  от диплоидния  брой  (т.е. 3n, 4n и т.н.). 
Структурна  аберация : промяна  в хромозомната  структура , 
откриваема  чрез наблюдение  с микроскоп  на етапа  на 
метафаза  на клетъчното  деление , наблюдавана  като делеции  и 
фрагменти , вътрешнохромозомни  или междухромозомни  
промени . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
Животни  се експонират  на тестваното  вещество  по подходящ  
начин  и се убиват  в подходящи  моменти  след  третирането . 
Преди  убиването  животните  се третират  с блокиращ  метафазата  
агент  (напр . колхицин  или Колцемид ®). След  това се приготвя  
хромозомен  препарат  от клетки  на зародиш , оцветява  се и 
клетките  в метафаза  се анализират  за хромозомни  аберации . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
1.4.1.  Подготовка  
1.4.1.1.  Подбор  на животинския  вид 
Мъжките  китайски  хамстери  и мишки  са общо  използваните . 
Обаче  мъжки  индивиди  от друг  подходящ  вид бозайници  също  
биха  могли  да се използват . За теста  следва  да се вземат  общо  
използваните  лабораторни  щамове  на млади , здрави , пораснали  
животни . В началото  на изследването  вариациите  в теглото  на 
животните  следва  да са минимални  и да не превишават  ± 20 % 
от средното  тегло . 
1.4.1.2.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Прилагат  се общите  условия  в Общото  въведение  към част Б, 
въпреки  че целта  е влажността  на въздуха  да е 50—60 %.  
1.4.1.3.  Подготовка  на животните  
Здрави , млади , пораснали  животни  от мъжки  пол се отделят  на 
произволен  принцип  за контролните  и опитните  групи . Клетките  
следва  да се подредят  така, че да се намалят  до минимум  евенту­  
алните  ефекти  от разполагането  им. На животните  се дава 
уникална  идентифакация . Животните  се аклиматизират  към 
лабораторните  условия  поне  пет дни преди  началото  на 
изследването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 386
 
1.4.1.4.  Приготвяне  на дози  
Твърдите  вещества  за теста  следва  да се разтворят  или 
суспендират  в подходящи  разтворители  или носители  и, ако 
следва , да се разредят  преди  даване  на дозата  на животните . 
Течните  вещества  за теста  могат  да се дават  директно  или да 
се разредят  преди  дозиране . Следва  да се използват  пресни  
препарати  на тестваното  вещество , освен  ако данните  за стабил­  
ността  му не показват , че може  да се съхранява . 
1.4.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.4.2.1.  Разтворител /носител  
Разтворителят /носителят  не следва  да има токсично  въздействие  
с използваните  нива  на дозиране , а също  така не следва  да има 
съмнения  за химическа  реакция  между  него  и тестваното  
вещество . Ако се използват  други , освен  добре  познатите  
разтворители /носители , включването  им в теста  следва  да се 
подкрепи  от данни  за съвместимостта  им. Препоръчва  се, 
винаги  когато  е възможно , първо  да се разглежда  възможността  
за прилагането  на воден  разтворител /носител . 
1.4.2.2.  Контроли  
Във всеки  тест следва  да се включват  паралелни  положителни  и 
отрицателни  (разтворител /носител ) контроли . Като  се изключи  
третирането  с тестваното  вещество , с животните  в контролните  
групи  следва  да се борави  по един  и същи  начин  както  с 
животните  от опитните  групи . 
Положителните  контроли  следва  да произвеждат  структурни  
хромозомни  аберации  in vivo  в сперматогониални  клетки , 
когато  се администрират  при нива  на експозиция , при които  
се очаква  да се постигне  забележимо  увеличение  спрямо  фона . 
Положителните  контролни  дози  следва  да са така избрани , че 
ефектите  да са ясни , но да не разкриват  непосредствено  на 
четеца  идентичността  на кодираните  предметни  стъкла . 
Приемливо  е положителните  контроли  да се администрират  по 
различен  начин  от тестваното  вещество  и да им се взема  проба  
само  еднократно . Освен  това за положителна  контрола  следва  да 
се разглежда  използването  на химикали , принадлежащи  към 
химичен  клас, когато  такива  са налични . Примерите  за полож­  
ителни  контролни  вещества  включват : 
Вещество  САS № ЕINЕСS № 
циклофосфамид  
циклофосфамид  монохидрат  50-18-0 
6055-19-2 200-015-4 
Циклохексамин  108-91-8 203-629-0 
Митомицин  С 50-07-7 200-008-6 
Акриламид  мономер  79-06-1 201-173-7 
Триетиленмеламин  51-18-3 200-083-5  
За всяко  вземане  на проби  следва  да се включват  отрицателните  
контроли , третирани  само  с разтворител  или носител , а за 
всичко  останало  третирани  както  опитните  групи , освен  ако 
няма  приемлива  изменчивост  между  животните  и честотите  на 
клетки  хромозомни  аберации  са доказани  с исторически  
контролни  данни  от предишни  изследвания . Освен  това следва  
също  да се използват  нетретирани  контроли , освен  ако няма  
данни  от предишни  контролни  изследвания  или публикувани  
контролни  данни , показващи , че няма  никакви  делеционни  или 
мутагенни  ефекти , индуцирани  от избрания  разтворител /­ 
носител . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 387
 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1  Брой  на животните  
Всяка  опитна  и контролна  група  следва  да включва  най-малко  
пет анализируеми  мъжки  животни . 
1.5.2.  График  на третиране  
За предпочитане  е тестваните  вещества  да се администрират  
веднъж  или два пъти  (т.е. като едно  или две третирания ). 
Тестваните  вещества  могат  също  да се администрират  като 
разделена  доза, т.е. две третирания  в един  и същи  ден, 
разделени  от не повече  от няколко  часа, за да се улесни  
даването  на голям  обем  материал . Други  режими  на дозиране  
следва  да се обосноват  научно . 
В групата  с най-висока  доза проби  се вземат  два пъти  след  
третирането . Тъй като кинетиката  на клетъчния  цикъл  може  да 
се повлияе  от тестваното  вещество , практикува  се едно  ранно  и 
едно  късно  вземане  на проба  около  24 и 48 часа след  
третирането . За дози , различни  от най-високата , проба  се 
взема  на 24 часа или 1,5 пъти  продължителността  на 
клетъчния  цикъл , освен  ако не е известно  друго  време  за 
вземане  на проба , по-подходящо  за откриване  на ефектите  (6). 
Освен  това могат  да се използват  други  времена  на вземане  на 
проби . Например  когато  се използват  химикали , които  могат  да 
индуцират  хромозомно  изоставане  или могат  да предизвикат  S- 
независими  ефекти , по-ранните  периоди  на вземане  проби  могат  
да бъдат  по-подходящи  (1). 
Доколко  е уместно  използването  на повторен  график  на 
третиране  следва  да се идентифицира  за всеки  случай  
поотделно . След  повторен  график  на третиране  животните  
следва  да бъдат  убити  24 часа (1,5 пъти  от продължителността  
на клетъчния  цикъл ) след  последното  третиране . При необ­  
ходимост  могат  да се прилагат  допълнителни  периоди  на 
вземане  на проби . 
Преди  убиването  животните  се инжектират  интраперитонеално  с 
подходящо  блокиращо  метафазата  вещество  (напр . Колцемид ® 
или колхицин ). След  това, след  подходящ  интервал , от 
животните  се взема  проба . За мишки  този интервал  е приблиз­  
ително  3—5 часа, за китайски  хамстери  той е около  4—5 часа. 
1.5.3.  Нива  на дозиране  
Ако се извършва  изследване  за обхват , поради  това че няма  в 
наличност  подходящи  данни , то следва  да се извърши  в същата  
лаборатория , като се използват  същият  вид, щам, пол и режим  
на третиране  както  в главното  изследване  (7). Ако има токс­  
ичност , за първото  вземане  на проба  се използват  три нива  на 
дозиране . Тези  нива  на дозиране  следва  да обхващат  от макс­  
имална  до слаба  или липса  на токсичност . При вземане  на проба  
на по-късен  етап следва  да се прилага  само  най-високата  доза. 
Най-високата  доза се дефинира  като доза, създаваща  признаци  
на такава  токсичност , че по-високи  нива  на дозиране , базирани  
на същия  режим , би могло  да се очаква  да доведат  до леталност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 388
 
Вещества  със специфични  биологични  активности  при ниски , 
нетоксични  дози  (като хормони  и митогени ) могат  да бъдат  
изключения  за критериите  за определяне  на дозата  и следва  да 
се оценяват  за всеки  конкретен  случай . Най-високата  доза може  
също  да се дефинира  като доза, която  показва  известни  
признаци  на токсичност  в сперматогониалните  клетки  (напр . 
намаляване  на съотношението  на сперматогониални  митози  
спрямо  първата  и втората  метафаза  на клетъчното  деление ; 
това намаляване  не следва  да надвишава  50 %).  
1.5.4.  Граничен  тест 
Ако тест с едно  ниво  на дозиране  от минимум  2 000 mg/kg 
телесно  тегло /ден при еднократно  третиране  или две третирания  
в един  и същи  ден не дава забележими  токсични  ефекти , а 
генотоксичност  не би могла  да се очаква  на базата  на данни  
от структурно  свързани  вещества , то тогава  пълно  изследване  
с три нива  на дозиране  може  да не се счита  за необходимо . 
Очакваната  експозиция  на хора  може  да покаже , че е необ­  
ходимо  в граничния  тест да се използва  по-високо  ниво  на 
дозиране . 
1.5.5.  Администриране  на дозите  
Тестваното  вещество  обикновено  се дава със стомашна  сонда , 
като се използва  тръба  или подходяща  интубационна  канюла , 
или чрез интраперитонеална  инжекция . Други  начини  на 
експозиция  са приемливи , ако могат  да бъдат  обосновани . Макс­  
ималният  обем  течност , който  може  да се вкара  еднократно  със 
стомашна  сонда  или инжекция , зависи  от големината  на 
опитното  животно . Обемът  не следва  да превишава  2 ml/100 g 
телесно  тегло . Обеми , по-високите  от тези, следва  да се обос­  
новат . С изключение  на дразнещи  или корозивни  вещества , 
които  нормално  дават  изострящи  ефекти  при по-високи  конце­  
нтрации , променливостта  на тестовия  обем  следва  да се сведе  до 
минимум  чрез регулиране  на концентрацията  с цел осигуряване  
на постоянен  обем  на всички  нива  на дозиране . 
1.5.6.  Подготовка  на хромозомите  
Незабавно  след  убиване  на животните  от един  или двата  тестиса  
се приготвят  клетъчни  суспензии , експонират  се на хипотоночен  
разтвор  и се фиксират . Клетките  се разнасят  по предметни  
стъкла  и се оцветяват . 
1.5.7.  Анализ  
За всяко  животно  следва  да се анализират  най-малко  100 добре  
разнесени  метафази  (т.е. минимум  500 метафази  на група ). Този  
брой  може  да се намали , когато  се наблюдават  голям  брой  
аберации . Всички  предметни  стъкла , включително  и тези на 
положителни  и отрицателни  контроли , следва  да се кодират  
независимо  едно  от друго  преди  микроскопския  анализ . Тъй 
като процедурите  по фиксиране  водят  до разкъсване  на част 
от метафазите  със загуба  на хромозоми , отчетените  клетки  
следва  да съдържат  известен  брой  центромери , равни  на броя  
2n ± 2.  
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Индивидуалните  данни  за животните  следва  да се представят  в 
таблица . Експерименталната  единица  е животното . За всяко  
изследвано  животно  отделно  се оценява  броят  клетки  със 
структурни  хромозомни  аберации  и хромозомни  аберации  на 
клетка . Следва  да се попоказват  различните  типове  структурни  
хромозомни  аберации  с броя  и честотота  им за опитните  и 
контролните  групи . Празнините  се записват  отделно  и 
докладват , но принципно  не се включват  в общата  честота  на 
аберациите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 389
 
Ако се наблюдава  митоза , както  и мейоза , следва  да се определи  
съотношението  на сперматогониалните  митози  спрямо  първата  и 
втора  мейотични  метафази  като мярка  за цитотоксичността  за 
всички  опитни  животни  и тези от отрицателните  контроли  в 
обща  проба  от 100 делящи  клетки  на животно , за да се 
установи  евентуален  цитотоксичен  ефект . Ако се наблюдава  
само  митоза , митозният  индекс  следва  да се определи  в 
минимум  1 000 клетки  за всяко  животно . 
2.2. ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , 
като свързано  с дозата  увеличение  в броя  клетки  хромозомни  
аберации  или явно  увеличение  в броя  на клетки  с аберации  при 
еднократна  доза и еднократно  вземане  на проба . Първо  следва  
да се вземе  предвид  биологичната  значимост  на резултатите . 
При оценката  на резултатите  от теста  като помощно  средство  
е възможно  използването  на статистически  методи  (8). Статист­  
ическата  значимост  не следва  да е единственият  решаващ  
фактор  за положителна  реакция . Двузначните  резултати  следва  
да се изяснят  чрез допълнителни  тестове , като за предпочитане  е 
да се изменят  условията  на експеримента . 
Тествано  вещество , за което  резултатите  не удовлетворяват  
горните  критерии , се счита  немутагенно  в настоящия  тест. 
Въпреки  че повечето  експерименти  дават  ясно  положителни  или 
отрицателни  резултати , в редки  случаи  наборът  данни  изключва  
възможността  да се направи  категорична  преценка  за актив­  
ността  на тестваното  вещество . Резултатите  могат  да останат  
двузначни  или под въпрос , независимо  от това колко  пъти  е 
повторен  опитът . 
Положителните  резултати  от теста  in vivo  за сперматогониални  
хромозомни  аберации  показват , че тестваното  вещество  
индуцира  структурни  хромозомни  аберации  в зародишните  
клетки  на тествания  вид. Отрицателните  резултати  показват , 
при условията  за провеждане  на теста , че тестваното  вещество  
не индуцира  хромозомни  аберации  в зародишните  клетки  на 
тествания  вид. 
Следва  да се обсъди  вероятността  тестваното  вещество  или 
метаболитите  му да достигнат  тъканта , която  е обект  на 
изследването . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  трябва  да включва  следната  информация : 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на носител , 
— разтворимост  и стабилност  на тестваното  вещество  в 
разтворител /носител , ако са известни . 
Опитни  животни : 
— вид/щам, 
— брой  и възраст  на животните , 
— източник , условия  на отглеждане , начин  на хранене  и др. 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на теста , в т.ч. 
обхват  на телесното  тегло , средни  стойности  и стандартно  
отклонение  за всяка  група . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 390
 
Условия  за провеждане  на теста : 
— основна  причина  за определяне  времето  на убиване  на 
животните , 
— данни  от изследването  за установяване  на обхват , ако е 
проведено , 
— основна  причина  за избора  на нивото  на дозата , 
— подробности  за приготвянето  на тестваното  вещество , 
— подробности  за администрирането  на тестваното  вещество , 
— основна  причина  за определяне  на момента  на убиване  на 
животните  
— преминаване  от концентрация  (ррm) на тестваното  вещество  
в храната /питейната  вода  към действителната  доза (mg/kg 
телесно  тегло ), ако е приложимо , 
— подробности  за качеството  на храната  и водата , 
— подробно  описание  на графиците  на третиране  и вземане  на 
проби , 
— методи  на измерване  на токсичността , 
— идентичност  на блокиращото  метафазата  вещество , конце­  
нтрация  и времетраене  на третирането , 
— методи  на приготвяне  на предметно  стъкло , 
— критерии  за отчитане  на аберации , 
— брой  анализирани  клетки /животно , 
— критерии  за считане  на изследванията  положителни , отриц­  
ателни  или двусмислени . 
Резултати : 
— признаци  на токсичност , 
— митотичен  индекс , 
— съотношение  на сперматогониалните  митозни  клетки  към 
първата  и втора  мейотична  метафаза , 
— тип и брой  на аберациите , дадени  отделно  за всяко  животно , 
— общ брой  аберации  на група , 
— брой  на клетки  с аберации  на група , 
— взаимоотношение  доза—реакция , където  е възможно , 
— статистически  анализи , ако има такива , 
— паралелни  отрицателни  контролни  данни , 
— отрицателни  контролни  данни  от предишни  изследвания  с 
обхвати , средни  стойности  и стандартни  отклонения , 
— паралелни  положителни  контролни  данни , 
— промени  в плоидията , ако се забелязват . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 391
 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Adler, I. D. (1986), Clastogenic Potential in Mouse Sperma ­
togonia of Chemical Mutagens Related to their Cell-Cycle Specifications, in: Genetic Toxicology of Environmental 
Chemicals, Part B: Genetic Effects and Applied Mutagenesis, 
Ramel, C, Lambert B., and Magnusson, J. (eds.) Liss, New York, pp. 477—484.
 
(2) Adler, I. D. (1984), Cytogenic tests in Mammals, in: Mutage ­
nicity Testing: a Practical Approach, ed. S. Venitt and J. M. Parry, IRL Press, Oxford, Washington DC, pp. 275—306.
 
(3) Evans, E. P., Breckon, G. and Ford, C. E. (1964), An Air- 
Drying Method for Meiotic Preparations from Mammalian Testes, Cytogenetics and Cell Genetics, 3, pp. 289—294.
 
(4) Richold, M., Ashby, J., Chandley, A., Gatehouse, D. G. and 
Henderson L. (1990), In Vivo Cytogenetic Assays, in: D. J. Kirkland (ed.), Basic Mutagenicity Tests, UKEMS Recom ­
mended Procedures. UKEMS Subcommittee on Guidelines for 
Mutagenicity Testing. Report. Part I revised, Cambridge 
University Press, Cambridge, New York, Port Chester, Melbourne, Sydney, pp. 115—141.
 
(5) Yamamoto, K. and Kikuchi, Y. (1978), A New Method for 
Preparation of Mammalian Spermatogonial Chromosomes, Mutation Res., 52, pp. 207—209.
 
(6) Adler, I. D., Shelby, M. D., Bootman, J., Favor, J., Generoso, 
W., Pacchierotti, F., Shibuya, T. and Tanaka, N. (1994), International Workshop on Standardisation of Genotoxicity Test Procedures. Summary Report of the Working 
Group on Mammalian Germ Cell Tests, Mutation Res., 312, 
pp. 313—318.
 
(7) Fielder, R. J., Allen, J. A., Boobis, A. R., Botham, P. A., Doe, 
J., Esdaile, D. J., Gatehouse, D. G., Hodson-Walker, G., 
Morton, D. B., Kirkland D. J. and Richold, M. (1992), Report of British Toxicology Society/UK Environmental Mutagen Society Working group: Dose setting in  In Vivo  Mutagenicity 
Assays, Mutagenesis, 7, pp. 313—319.
 
(8) Lovell, D. P., Anderson, D., Albanese, R., Amphlett, G. E., 
Clare, G., Ferguson, R., Richold, M., Papworth, D. G. and 
Savage, J. R. K. (1989), Statistical Analysis of  In Vivo  Cyto­
genetic Assays, in: D. J. Kirkland (ed.), Statistical Evaluation of Mutagenicity Test Data. UKEMS Sub-Committee on Guidelines for Mutagenicity Testing, report, Part III, Cambridge University 
Press, Cambridge, New York, Port Chester, Melbourne, Sydney, 
pp. 184—232.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 392
 
Б.24. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ПЕТНА  ПО КОЗИНАТА  ПРИ  МИШКИ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Това  е изпитване  in vivo  върху  мишки , при който  развиващите  
се зародиши  се подлагат  на експозиция  на химически  вещества . 
Целевите  клетки  в развиващите  се зародиши  са меланобластите , 
а целевите  гени  са тези, които  контролират  пигментирането  на 
космите  на козината . Развиващите  се зародиши  са хетерозиготни  
по много  от тези гени  за цвета  на козината . Една  мутация  в 
доминантния  алел  или загуба  на доминантния  алел  на такъв  
ген в меланобластна  клетка  (причинени  от разнообразни  
генетични  събития ) водят  до изява  на рецесивния  фенотип  в 
клетките  потомци , което  се изразява  в петно  с променен  цвят  
по козината  на получената  мишка . Оценява  се броят  на 
потомството  с такива  петна  (т.е. мутации ) и честотата  им се 
сравнява  с тази сред  поколението , получено  от зародиши , 
които  са третирани  само  с разтворител . Изпитването  за петна  
по козината  при мишки  открива  предполагаеми  соматични  
мутации  във феталните  клетки . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Когато  е възможно , изпитваните  вещества  трябва  да бъдат  разт­  
ворени  или суспендирани  в изотоничен  физиологичен  разтвор . 
Неразтворимите  във вода  химически  вещества  могат  да бъдат  
разтворени  или суспендирани  в подходящи  носители . 
Използваният  носител  не трябва  да оказва  влияние  върху  
изпитваното  химическо  вещество , нито  да предизвиква  
токсични  ефекти . Трябва  да се използват  прясно  приготвени  
препарати  от изпитваните  химически  вещества . 
Е к с п е р и м е н т а л н и ж и в о т н и 
Мишки  от породата  T (nonagouti, a/a; chinchilla, pink eye, c  ch 
p/c ch p; brown, b/b; dilute, short ear, d se/d se; piebald spotting, 
s/s) са чифтосани  с породата  HT (pallid, nonagouti, brachypody, 
pa a bp/pa a bp; leaden fuzzy, ln fz/ln fz; pearl pe/pe) или C57BL 
(nonagouti, a/a). Могат  да се използват  други  подходящи  
кръстоски , например  между  NMRI (nonagouti, a/a; albino, c/c) и 
DBA (nonagouti, a/a; brown, b/b; dilute d/d), при условия  че от тях 
се получава  потомство  неагути . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 393
 
Б р о й и п о л 
Третират  се достатъчно  на брой  бременни  женски  индивиди , за 
да се получи  подходящ  брой  преживяващо  поколение  за всяко  
използвано  ниво  на дозиране . Подходящата  големина  на 
извадката  зависи  от броя  на наблюдаваните  петна  при 
третираните  мишки  и от количеството  контролни  данни . Отриц­  
ателният  резултат  е приемлив  само  ако се оценяват  най-малко  
300 индивида  от потомството  на женските  животни , третирани  с 
най-високата  доза. 
И з п о л з в а н е н а о т р и ц а т е л н и и п о л о ж и т е л н и 
к о н т р о л и 
Трябва  да има паралелни  контролни  данни  от мишки , третирани  
само  с носител  (отрицателни  контроли ). От историческите  
контролни  данни  от същата  лаборатория  може  да се направи  
пул, за да се повиши  чувствителността  на изпитването , при 
условие  че тези данни  са хомогенни . Ако не бъде  открита  
мутагенност  на изпитваното  химическо  вещество , трябва  да 
съществуват  новополучени  положителни  контролни  данни  за 
третиране  с химическо  вещество , за което  е известно , че при 
това изпитване  демонстрира  мутагенност , от същата  
лаборатория . 
Н а ч и н н а п р и л а г а н е 
Обичайните  начини  на прилагане  са чрез орално  интубиране  или 
интрапериотонеално  инжектиране  при бременните  женски  
индивиди . Когато  е целесъобразно , се използват  третиране  
чрез инхалиране  или други  начини  на прилагане . 
Н и в а н а д о з и р а н е 
Използват  се най-малко  две нива  на дозиране , включително  
едно , при което  се наблюдават  признаци  на токсичност  или 
намалена  големина  на котилото . За нетоксичните  вещества  
трябва  да се използва  експозиция  на максималната  възможна  
доза. 
Процедура  
Нормално  се провежда  единично  третиране  на ден 8,9 или 10 от 
бременността , като за ден 1 се брои  денят , на който  за първи  път 
се наблюдава  вагинална  запушалка . Тези  дни съответстват  на 
дни 7,25, 8,25 и 9,25 след  зачеването . През  тези дни може  да 
се използва  последователно  третиране . 
А н а л и з 
Потомството  се кодира  и изследва  за петна  между  три и четири  
седмици  след  раждането . Различават  се три класа  петна : 
а) бели  петна  на разстояние  до 5 мм от средната  коремна  линия  
(WMVS), за които  се смята , че се дължат  на убийство  на 
клетки ; 
б) жълти , подобни  на агути , петна , асоциирани  с гръдните  
жлези , гениталиите , гърлото , аксиларните  и ингвиналните  
области  и по средата  на челото , за които  се смята , че се 
дължат  на нарушена  диференциация  (MDS), и 
в) пигментирани  и бели  петна , случайно  разпръснати  по 
козината , за които  се смята , че се дължат  на соматични  
мутации  (RS).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 394
 
Отчитат  се всичките  три класа , но само  един  от тях, последният  
RS, има генетично  значение . Проблемите  с разграничаването  
между  MDS и RS могат  да бъдат  разрешени  с помощта  на 
флуоресцентна  микроскопия  на проби  от косми . 
Трябва  да се отбележат  очевидните  макроскопски  аномалии  при 
потомството . 
2. ДАННИ  
Данните  се представят  като общ брой  на проследяваното  
потомство  и брой  на индивидите  с едно  или повече  петна , за 
които  се предполага , че се дължат  на соматични  мутации . 
Данните  от третираните  групи  и отрицателните  контроли  се 
сравняват  с помощта  на подходящи  методи . Данните  се 
представят  и за отделно  котило . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— породите , използвани  при кръстосването , 
— броят  бременни  женски  животни  в експерименталната  и 
контролната  група , 
— средната  големина  на котилото  в експерименталната  и 
контролната  група  при раждането  и при отбиването , 
— нивото (ата) на дозиране  на изпитваното  химическо  вещество , 
— използваният  разтворител , 
— денят  от бременността , на който  е извършено  третирането , 
— начинът  на третиране , 
— общият  брой  проследявано  потомство  и броят  на животните  
с WMVS, MDS и RS в експерименталните  и контролните  
групи , 
— микроскопските  морфологични  аномалии , 
— когато  е възможно , връзката  доза/отговор  за RS, 
— статистическа  оценка , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите , 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 395
 
Б.25. НАСЛЕДСТВЕНИ  ТРАНСЛОКАЦИИ  ПРИ  МИШКИ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитването  за наследствени  транслокации  при мишки  открива  
структурните  и бройните  изменения  в хромозомите  в зародишни  
клетки  от бозайници , както  се проявяват  при потомството  от 
първо  поколение . Откриваните  хромозомни  изменения  са от 
типа  на реципрочните  транслокации  и, ако се включи  
женското  потомство , загуба  на X-хромозоми . Носителите  на 
транслокации  и женските  индивиди  с ХО-генотип  демонстрират  
намалена  плодовитост , която  се използва  за селекция  на 
потомство  от поколение  F 1 за цитогенетичен  анализ . Пълно  
безплодие  се причинява  от определени  типове  транслокации  
(Х-автозомни  и c-t-тип). Транслокациите  се наблюдават  цитоген­  
етично  в мейотичните  клетки  в метафаза  I на диакинезата  при 
мъжките  индивиди  от поколение  F 1 , или мъжкото  потомство  на 
женските  от поколение  F 1 . Женските  с ХО-генотип  се идент­  
ифицират  генетично  по наличието  само  на 39 хромозоми  при 
митозите  в костния  мозък . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Изпитваните  химически  вещества  се разтварят  в изотоничен  
физиологичен  разтвор . Ако са неразтворими , те се разтварят  
или суспендират  в подходящи  носители . Използват  се прясно  
приготвени  разтвори  на изпитваното  съединение . Ако за 
улесняване  на дозирането  се използва  носител , той не трябва  
да влияе  на изпитваното  съединение , нито  да предизвиква  
токсични  ефекти . 
Н а ч и н н а п р и л а г а н е 
Обикновено  начините  на прилагане  са орална  интубация  или 
интраперитонеално  инжектиране . Може  да са целесъобразни  
други  начини  на прилагане . 
Е к с п е р и м е н т а л н и ж и в о т н и 
За улесняване  на отглеждането  и цитологичното  потвърждаване  
тези експерименти  се правят  с мишки . Не е необходима  
конкретна  порода  мишки . Средната  големина  на котилото  на 
породата , обаче , трябва  да е по-голяма  от осем  и да бъде  относ­  
ително  постоянна . 
Използват  се здрави  полово  зрели  животни . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 396
 
Б р о й н а ж и в о т н и т е 
Броят  на необходимите  животни  зависи  от честотата  на 
спонтанните  транслокации  и от минималната  честота  на 
предизвикването , необходима  за положителен  резултат . 
Изпитването  обикновено  се провежда  посредством  анализиране  
на мъжкото  потомство  F 1 . Трябва  да се изследват  най-малко  по 
500 мъжки  индивида  от поколението  F 1 за дозирана  група . Ако 
се включват  женските  животни  от поколение  F 1 , необходими  са 
300 мъжки  и 300 женски  индивида . 
И з п о л з в а н е н а о т р и ц а т е л н и и п о л о ж и т е л н и 
к о н т р о л и 
Трябва  да съществуват  адекватни  данни , получени  от паралелни  
и исторически  контроли . Когато  съществуват  приемливи  полож­  
ителни  контролни  резултати  от наскоро  проведени  в същата  
лаборатория  експерименти , тези резултати  могат  да бъдат  
използвани  вместо  паралелна  положителна  контрола . 
Н и в а н а д о з и р а н е 
Изпитва  се едно  ниво  на дозиране , обикновено  най-високата  
доза, свързана  с предизвикване  на минимални  токсични  
ефекти , но без засягане  на размножителното  поведение  или 
преживяването . За да се установи  връзката  доза/отговор , са 
необходими  две допълнителни  по-ниски  дози . За нетоксичните  
вещества  трябва  да се използва  експозиция  на максималната  
възможна  доза. 
Процедура  
Т р е т и р а н е и ч и ф т о с в а н е 
Съществуват  две схеми  за третиране . Най-широко  се използва  
еднократното  прилагане  на изпитваното  вещество . Може  да се 
използва  и прилагане  на изпитваното  вещество  седем  дни в 
седмицата  в продължение  на 35 дни. Броят  на чифтосванията  
след  третирането  зависи  от схемата  на третиране  и трябва  да 
осигури  вземане  на проби  от всички  третирани  стадии  на 
развитие  на зародишните  клетки . В края  на чифтосването  
женските  животни  се настаняват  в индивидуални  клетки . 
Когато  женските  родят , регистрират  се датата , големината  на 
котилото  и полът  на потомството . Цялото  мъжко  потомство  се 
отбива  и цялото  женско  потомство  се изхвърля , освен  ако не е 
включено  в експеримента . 
И з п и т в а н е з а х е т е р о з и г о т н о с т н а т р а н с л о к ­ 
а ц и и т е 
Използва  се единият  от два възможни  метода : 
— изпитване  за плодовитост  на потомството  F 1 и последващо  
потвърждаване  на възможните  носители  на транслокация  
чрез цитогенетичен  анализ , 
— цитогенетичен  анализ  на всички  мъжки  индивиди  от 
поколението  F 1 без предварителна  селекция  чрез изпитване  
за плодовитост . 
а) Изпитване  за плодовитост  
Намалената  плодовитост  на даден  индивид  от поколение  F 1 
може  да се установи  чрез наблюдение  на големината  на 
котилото  и/или анализ  на съдържанието  на матката  при 
женските  индивиди . 
За използваната  порода  мишки  трябва  да бъдат  установени  
критериите  за определяне  на нормална  и намалена  плодов­  
итост . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 397
 
Наблюдение  на големината  на котилото : Експерименталните  
мъжките  индивиди  от поколение  F 1 трябва  да се настанят  в 
индивидуални  клетки  с женски  от същия  експеримент  или от 
колонията . Клетките  се проверяват  ежедневно  от 18-ия ден 
след  чифтосването . Големината  на котилото  и полът  на 
потомството  F 2 се регистрират  при раждането  и след  това 
котилата  се изхвърлят . Ако се изследва  женското  потомство  
от поколение  F 1 , потомството  от поколение  F 2 от малките  
котила  се запазва  за допълнително  изпитване . Женските  
носители  на транслокации  се потвърждават  посредством  
цитогенетичен  анализ  на транслокациите  в пялото  им 
мъжко  потомство . Женските  животни  с ХО-генотип  се разп­  
ознават  по измененото  съотношение  между  половете  в 
тяхното  потомство  от 1:1 на 1:2 мъжки  към женски  
индивиди . При следваща  процедура  нормалните  животни  
от поколение  F  1 се елиминират  от допълнителното  
изпитване , ако първото  котило  от поколение  F 2 достигне  
или превиши  предварително  определена  нормална  
големина . В противен  случай  се наблюдават  второ  или 
трето  котило  от поколение  F 2 . 
Животните  от поколение  F 1 , които  не могат  да бъдат  клас­  
ифицирани  като нормални  след  наблюдение  на до три котила  
от поколение  F 2 , се изследват  допълнително  чрез анализ  на 
съдържанието  на матката  на женските  партньори  или 
направо  се подлагат  на цитогенетичен  анализ . 
Анализ  на съдържанието  на матката : Намаляването  на 
големината  на котилото  при носителите  на транслокация  се 
дължи  на смърт  на зародиши , така че големият  брой  мъртви  
имплантирани  зародиши  е показателен  за наличието  на 
транслокация  при експерименталното  животно . Всеки  от 
експерименталните  мъжки  индивиди  от поколение  F 1 се 
чифтосва  с по две до три женски  животни . Зачеването  се 
установява  чрез ежедневна  сутрешна  проверка  за вагинални  
запушалки . Женските  се пожертват  14 до 16 дни по-късно  и 
се регистрират  живите  и мъртвите  имплантирани  зародиши  в 
матките  им. 
б) Цитогенетичен  анализ  
Препарати  от тестиси  се приготвят  по техниката  за 
изсушаване  с въздух . Носителите  на транслокации  се идент­  
ифицират  по наличието  на мултивалентни  конфигурации  в 
метафаза  I на диакинезата  на първичните  сперматоцити . За 
да се докаже , че едно  животно  е носител  на транслокация , 
трябва  да се наблюдават  поне  две клетки  с мултивалентно  
асоцииране . 
Ако не е извършвана  селекция  чрез кръстосване , всички  
мъжки  индивиди  от поколение  F 1 се анализират  цитоген­  
етично . Трябва  да се направи  микроскопски  анализ  на най- 
малко  25 клетки  в метафаза  I на диакинезата  за мъжки  
индивид . При мъжките  индивиди  от поколение  F 1 , които  
имат  малки  тестиси  и мейотично  разкъсване  преди  
диакинезата , или при женски  индивиди  от поколение  F 1 , за 
които  се подозира , че имат  ХО-генотип , трябва  да се 
изследват  митотичните  метафази  в сперматогонии  или 
костен  мозък . Наличието  на необичайно  дълга  и/или къса  
хромозома  във всяка  една  от 10 клетки  свидетелства  за 
особена  транслокация , причиняваща  безплодие  при 
мъжките  индивиди  (с-t-тип). Някои  Х-автозомни  транс­  
локации , които  причиняват  безплодие  при мъжките  
индивиди , могат  да бъдат  идентифицирани  само  посредством  
анализ  на ивиците  на митотичните  хромозоми . Наличието  на 
39 хромозоми  при всички  10 митози  свидетелства  за наличие  
на ХО-генотип  в женски  индивид . 
2. ДАННИ  
Данните  се представят  в табличен  вид. 
За всяко  чифтосване  се съобщават  средната  големина  на 
котилото  и съотношението  между  половете  от чифтосванията  
на родителите  при раждането  и при отбиването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 398
 
За оценка  на плодовитостта  на животните  от поколение  F 1 се 
представят  средната  големина  на котилото  от всички  нормални  
чифтосвания  и големината  на отделните  котила  на носителите  на 
транслокации  от поколение  F 1 . За анализиране  на съдържанието  
на матката  се отчитат  средният  брой  на живите  и мъртвите  
имплантирани  зародиши  от нормалните  чифтосвания  и броят  
на живите  и мъртвите  имплантирани  зародиши  за всяко  чифт­  
осване  поотделно  за носителите  на транслокации  от поколение  
F 1 . 
За цитогенетичен  анализ  на метафаза  I на диакинезата  се 
изброяват  броят  на типовете  мултивалентни  конфигурации  и 
общият  брой  на клетките  за всеки  носител  на транслокация . 
За стерилните  индивиди  от поколение  F 1 се съобщават  общият  
брой  чифтосвания  и продължителността  на чифтосването . Дават  
се теглата  на тестисите  и подробности  от цитогенетичния  
анализ . 
За женските  с ХО-генотип  се съобщават  средната  големина  на 
котилото , съотношението  между  половете  в потомството  F 1 и 
резултатите  от цитогенетичния  анализ . 
Когато  евентуалните  носители  на транслокации  от поколението  
F 1 се селекционират  предварително  с помощта  на изпитвания  за 
плодовитост , таблиците  трябва  да включват  информация  за това 
колко  от индивидите  са потвърдени  хетерозиготи  по отношение  
на транслокацията . 
Съобщават  се данните  от отрицателните  контроли  и положит­  
елните  контролни  експерименти . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— порода  мишки , възраст  на животните , тегло  на третираните  
животни , 
— брой  на животните  от родителското  поколение  от всеки  пол 
в експерименталните  и контролните  групи , 
— условия  на изпитването , подробно  описание  на третирането , 
нива  на дозиране , разтворители , схема  на чифтосването , 
— брой  и пол на потомството  за един  женски  индивид , брой  и 
пол на потомството , отгледано  за анализ  на транслокациите , 
— време  и критерии  за анализ  на транслокациите , 
— брой  и подробно  описание  на носителите  на транслокации , 
включително  данни  за кръстосването  и данни  за 
съдържанието  на матката , ако е необходимо , 
— цитогенетични  процедури  и подробности  за микроскопския  
анализ , за предпочитане  със снимки , 
— статистическа  оценка , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 399
 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
4. ПРЕПРАТКИ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 400
 
Б.26. ТЕСТВАНЕ  НА СУБХРОНИЧНА  ОРАЛНА  ТОКСИЧНОСТ  
— 90-ДНЕВНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА ТОКСИЧНОСТТА  ПРИ  
ГРИЗАЧИТЕ  С ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изследване  на субхроничната  орална  токсичност  е 
точно  копие  на ОИСР  TG 408 (1998).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Когато  се извършва  оценка  и изчисление  на токсичните  
характеристики  на химикала , субхроничната  токсичност , 
използваща  повторни  дози  може  да се определи , след  като е 
била  получена  предварителна  информация  от токсичността  от 
28-дневни  тестове  на токсичността  с акутна  и повторена  доза. 
90-дневното  изследване  предоставя  информация  за възможните  
рискове  за здравето , произтичащи  по всяка  вероятност  от 
повтарящото  се излагане  за продължителен  период  от време , 
покриващ  времето  на узряване  след  отбиване  от кърмене  и 
развитието  до пълнолетие . Това  изследване  предоставя  
информация  за основните  ефекти  от токсичността , посочва  
засегнатия  орган  и възможността  за акумулиране , както  и 
може  да предостави  оценка  за нивото  на ненаблюдавано  
вредно  въздействие  при излагане , която  може  да се използва  
при определена  доза за хронично  изследване  и за създаване  на 
критерии  за защита  при излагане  на хората . 
Този  метод  допълнително  набляга  на неврологичните  окончания  
и отбелязва  въздействията  върху  имунната  и репродуктивната  
системи . Набляга  се и върху  нуждата  от обстойни  клинични  
наблюдения , правени  над животни  с цел да се получи  колкото  
е възможно  повече  информация . Такова  изследване  позволява  
индентификация  на химикалите , които  може  да въздействат  
върху  невротоксични , имунни  и репродуктивни  органи  и което  
може  да даде  основание  за по-нататъшни  и по-дълбоки  
изследвания . 
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Доза : е определено  количество  извлечено  вещество , дадено  за 
тестване . Дозата  се изразява  като тегло  (g, mg) или като тегло  на 
тестваното  вещество  върху  определена  единица  тегло  от 
тестваното  животно  (т.е. mg/kg), или като постоянни  диетични  
концентрации  (pрm). 
Дозировка : е обобщен  термин  състоящ  се от отделните  дози , 
тяхната  честота  и продължителност . 
NOAEL : е абревиатура  за ниво  на ненаблюдавано  неблаг­  
оприятно  въздействие  и е най-високото  ниво  на дозиране , 
където  не се наблюдават  неблагоприятни  открития , свързани  с 
третирането . 
1.3. ПРИНЦИПИ  НА МЕТОДА  ЗА ТЕСТВАНЕ  
Веществото , което  се тества , се приема  всекидневно  през устата  
в последователни  дози  от няколко  групи  от експериментални  
животни , посредством  едно  ниво  на дозиране  за една  група  за 
период  от 90 дни. По време  на периода  на приемането  
животните  се наблюдават  отблизо  за появяване  на признаци  на 
токсичност . В края  на изследването  се прави  аутопсия  на 
животните , които  са умрели  или са убити  по време  на 
извършването  на опитите , а при завършването  на изследването , 
оцелелите  животни  също  се убиват  и се извършва  аутопсия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 401
 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ТЕСТВАНЕ  
1.4.1.  Подготовка  на животните  
Използват  се здравите  животни , които  са приспособени  към 
лабораторните  условия  за период  от поне  пет дена  и които  не 
са били  обект  на предишно  експериментални  процедури . 
Животните , които  се използват  при извършване  на изследването , 
се характеризират  според  вида , рода , източника , пола , теглото  
и/или годините . Животните  се разпределят  случайно  на 
контролни  групи  и групи  за обработване . Клетките  се 
подреждат  така, че да се да се сведат  до минимум  възможните  
влияния , получени  в резултата  от разположението  на клетките . 
За всяко  животно  се определя  уникален  идентификационен  
номер . 
1.4.2.  Подготовка  на дозите  
Веществото , което  се изследва , се приема  през тръбичка  или при 
хранителен  режим  или чрез питейната  вода . Методът  на 
приемане  на веществото  през устата  се определя  в зависимост  
от целите  на изследването  и физичните /химични  свойства  на 
тествания  материал . 
При необходимост  веществото , което  се изследва , се разтваря  
или суспендира  в подходящ  разтворител . Където  е възможно  
се препоръчва  първо  употребата  на воден  разтвор /суспензия , 
последвана  от петролен  разтвор /емулсия , след  което  е 
възможен  разтвор  с други  разтворители . Трябва  да се познати  
токсичните  характеристики  на разтворителите , различни  от вода . 
По време  на процеса  на приемане  се определя  и устойчивостта  
на веществото , което  се изследва . 
1.4.3.  Условия , при които  се извършва  теста  
1.4.3.1.  Опитни  животни  
Предпочитаните  видове  са плъхове , въпреки  че могат  да се 
използват  и други  видове  от гризачи , например  мишки . 
Употребяват  се родовете  от млади , здрави , възрастни  животни , 
които  обичайно  се използват  в лабораториите . Женските  
индивиди  трябва  да не са раждали  и да не са бременни . 
Дозирането  започва  колкото  е възможно  по-скоро  след  
отбиването  на животното  и при всички  случаи  преди  то да е 
навършило  девет  седмици . При започване  на изследването  
измененията  в теглото  на използваните  животни  следва  да 
бъде  минимално  и да не надвишава  20 % от средното  за всеки  
пол тегло . Когато  изследването  се провежда  като предварително  
по отношение  на следващо  дългосрочно  изследване  на хрон­  
ичната  токсичност , и за двете  изследвания  следва  да се 
използват  животни  от същия  род и източник . 
1.4.3.2.  Брой  и пол 
Поне  20 животни  (10 женски  и 10 мъжки ) следва  да се 
използват  при всяко  ниво  на дозиране . Ако се планира  
умъртвяване  на животни , преди  завършването  на изследването , 
броят  им се увеличава  в зависимост  от броя  на животните , които  
са планирани  да бъдат  умъртвени . Въз основа  на предишни  
познания  върху  химикала  или върху  близък  до него  аналог  се 
разглежда  въпроса  относно  включването  на допълнителна  
придружаваща  група  от 10 животни  (по пет за всеки  пол), 
поставени  в контролната  група  и в групата  с най-висока  доза 
за наблюдаване , след  периода  на третиране , на способността  за 
реверсиране  и устойчивостта  на всякакви  токсични  въздействия . 
Продължителността  на периода  след  обработката  се определя  по 
подходящ  начин  с оглед  наблюдаваните  въздействия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 402
 
1.4.3.3.  Нива  на дозите  
Използват  се поне  три нива  дози  и една  за едновременен  контрол , с 
изключение  на случаите , когато  се извършват  ограничени  тестове  
(виж 1.4.3.4). Нивата  на дозите  може  да са основани  на резултатите  
от повтаряната  доза или на обем  от сведения , получени  от 
проучвания  и се вземат  предвид  всички  съществуващи  токсик­  
ологични  и токсико -кинетични  данни  за тестваното  вещество  или 
съответните  материали , които  са на разположение . Освен  
ограничена  от физико -химичната  природа  или биологичните  възде­  
йствия  на тестваното  вещество , най-високото  ниво  на дозата  се 
избира  с цел да се намали  токсичността , но не и смъртта  или 
ужасното  страдание . Избира  се намаляваща  последователност  на 
нивата  на дозата  с оглед  да се покажат  всички  ответни  реакции  и 
ненаблюдаваното  неблагоприятно  въздействие  (NOAEL) на най- 
ниското  ниво  на дозата . Два от четирите  затворени  интервала  са 
често  оптимални  за поставяне  на намаляващите  нива  на дозата  и 
допълнението  от четвърта  групи  за тестване  често  се предпочита , за 
да се използват  големи  интервали  (например  повече  от един  фактор  
от около  6—10) между  дозирането . 
Контролната  група  е група , която  не е третирана  или групата  за 
контрол  на разтворителя , при условие  че разтворителят  се 
използва  при приемане  на веществото , което  се изследва . С 
изключение  на самата  обработка  с веществото , което  се 
изследва , животните  в контролната  група  се третират  по 
същия  начин  като тези от групите  за тестване . Ако се 
използва  разтворител , контролната  група  получава  най- 
високото  използвано  количество  от разтвора . Ако тестваното  
вещество  се приема  чрез хранителен  режим  и причини  
намалено  приемане  на храна , тогава  една  контролна  група  за 
сверяване  може  да бъде  полезна  при правенето  на разлика  
между  намаляването  в резултат  на липсата  на вкус  или токсик­  
ологични  изменения  при модела  за изследване . 
Когато  е целесъобразно , се разглеждат  следните  характеристики  
на разтвора  или други  адитивни  свойства : въздействия  върху  
абсорбцията , разпределението , метаболизма  или задържане  на 
веществото , което  се изследва ; въздействия  върху  химичните  
свойства  на веществото , което  се изследва , което  може  да 
измени  неговите  токсикологични  характеристики ; и въздействия  
върху  консумацията  на храна  и вода  или хранителния  статус  на 
животните . 
1.4.3.4.  Ограничен  тест  
Ако тест, при ниво  на дозата , равна  на поне  1 000 mg/kg телесно  
тегло  на ден, който  използва  процедурите , описани  за това 
изследване , причинява  ненаблюдавани  неблагоприятни  възде­  
йствия  и ако въз основа  на данни  от вещества , отнасящи  се до 
структурата , не се очаква  токсичност , то пълното  проучване  с 
използване  на трите  нива  дози  не може  да се счита  за необходимо . 
Ограниченият  тест се прилага , с изключение  когато  излагането  на 
човека  подсказва  нуждата  от използване  на по-високо  ниво  доза. 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1.  Приемане  на дозите  
Животните  приемат  дозата  от тестваното  вещество  всеки  ден в 
продължение  на седем  дни, всяка  седмица  за периода  от 90 дни. 
Посочват  се причините  за използването  на всеки  друг  режим  на 
приемане  на дозата , например  от 5 дни. Когато  вещество  се 
приема  при хранене  с тръбичка , това става  като една  доза се 
дава на животното  чрез стомашна  тръба  или подходяща  интуб­  
ационна  канула . Максималното  количество  течност , което  може  
да бъде  прието  наведнъж , зависи  от размера  на тестваното  
животно . Количеството  не може  да превишава  1 ml/100 g 
телесно  тегло , освен  в случаите  на воден  разтвор , когато  могат  
да се използват  2 ml/100g телесно  тегло . Освен  в случаите  на 
дразнещи  и корозивни  вещества , които  нормално  ще показват  
засилени  въздействия  с висока  концентрация , променливостта  в 
количеството  се намалява  до минимум  чрез регулиране  на 
концентрацията  за да се осигури  постоянно  количество  при 
всички  нива  на дозиране . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 403
 
За вещества , които  се приемат  чрез хранителен  режим  или вода  
за пиене , е важно  да се гарантира , че количеството  използвано  
вещество  за изследване  не въздейства  върху  нормалното  хранене  
и водния  баланс . Когато  веществото , което  се изследва  се 
приема  чрез хранителен  режим , може  да се използват  или 
постоянна  хранителна  концентрация  (ррm) или постоянно  ниво  
на доза от гледна  точка  на телесното  тегло  на животното ; трябва  
да се определи  използваният  алтернативен  вариант . За вещество , 
което  се приема  при хранене  с тръбичка , дозата  се дава по едно  
и също  време  всеки  ден и е пригодена , в случаи  на необход­  
имост , да поддържа  постоянно  ниво  на дозата  с оглед  телесното  
тегло  на животното .Когато  90-дневното  изследване  се използва  
като предварително  по отношение  на дългосрочно  изследване  на 
хроничната  токсичност , и при двете  изследвания  следва  да се 
използва  един  и същ хранителен  режим . 
1.5.2.  Наблюдения  
Периодът  на наблюдение  е най-малко  90 дни. Животните  от 
придружаващата  група , които  са разпределени  за следващи  
наблюдения , се запазват  за подходящ  период  без да бъдат  
третирани  с цел да се уточни  устойчивостта  им или възста­  
новяването  от токсичните  въздействия . 
Поне  един  път на ден следва  да се правят  основни  клинични  
наблюдения , за предпочитане  по едно  и също  време , като се 
разглежда  максималния  период  на предвидените  въздействия  
след  получаване  на дозата . Клиничните  условия , при които  
живеят  животните , следва  да се описват . Поне  два пъти  на ден, 
обикновено  в началото  и в края  на деня , всички  животни  се 
оглеждат  за проявени  признаци  на заболеваемост  или смъртност . 
Поне  един  път преди  първото  излагане  (с цел да е възможно  
сравнение  в рамките  на обекта ) и след  това поне  веднъж  в 
седмицата  на всички  животни  следва  да се правят  подробни  
клинични  изследвания . Тези  изследвания  се правят  извън  
клетката , която  обитава  животното , за предпочитане  в стандартна  
обстановка  и във всички  случаи  по едно  и също  време . Тези  
изследвания  се описват  внимателно , за предпочитане  се 
използват  изчислителни  системи , изрично  определени  от 
лабораторията , която  извършва  теста . Полагат  се необходимите  
усилия , за да се гарантира , че променливостта  в условията  за набл­  
юдаване  и минимална . Забелязаните  признаци  следва  да включват , 
но не и да се ограничават  само  с: изменения  в кожата , козината , 
очите , лигавиците , появяване  на секреции  и екскреция  и 
органична  независима  активност  (например  лакримация , пило - 
ерекция , размер  на зеницата , необикновена  респираторна  схема ). 
Записват  се също  и изменения  в походката , стойката  и чувствит­  
елност  при маневриране , както  и наличието  на спазми  или 
свивания  на мускулите , стереотипа  (например  остатъчно  
дращене , повтарящо  се обикаляне  в кръг ) или странно  държание  
(например  самоосакатяване , вървене  назад ) (1).  
Преди  приемането  на веществото , което  се изследва  и при прик­  
лючването  на изследването , се прави  офталмологичен  преглед  
чрез използване  на офталмоскоп  или равнозначно  подходящо  
оборудване , за предпочитане  на всички  животни , но поне  при 
групата  с най-високо  ниво  доза и контролната  група . Ако се 
открият  изменения  при очите , всички  животни  се подлагат  на 
преглед . 
Към края  на изследването  и във всички  случаи  не по-рано  от 
единадесетата  седмица , се проверява  чувствителната  
реактивност  по отношение  на различни  видове  стимуланти  (1) 
(например  слухови , визуални  и проприосептични  стимуланти ) 
(2), (3), (4), оценка  на силата  при хващане  (5) и оценка  на двиг­  
ателната  активност  (6). Допълнителни  уточнения  по 
процедурите , които  могат  да се следват , са дадени  в съответните  
препратки . Въпреки  всичко  могат  да се използват  и 
алтернативни  процедури , различни  от тези, към които  се 
препраща . 
Проведените  в края  на изследването  функционални  наблюдения  
могат  се пропуснат , когато  са на разположение  данните  от 
функционалните  наблюдения  от други  изследвания  и когато  
всекидневните  клинични  наблюдения  не показват  никакви  
функционални  недостатъци . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 404
 
По изключение , функционалните  наблюдения  могат  също  да се 
избегнат  за групи , които  иначе  показват  признаци  на токсичност  
в размер , който  значително  би попречил  на извършването  на 
функционалния  тест. 
1.5.2.1.  Телесно  тегло  и консумация  на храна /вода  
Теглото  на всички  животни  следва  да се измерва  поне  един  път 
в седмицата . Консумацията  на храна  също  се измерва  един  път 
седмично . Ако веществото , което  се изследва , се приема  чрез 
водата  за пиене , един  път в седмицата  се измерва  и консум­  
ацията  на вода . Консумацията  на вода  може  също  да се вземе  
предвид  при проучвания  на хранителния  режим  или при хранене  
с тръбичка , когато  питейната  активност  може  да се измени . 
1.5.2.2.  Хематология  и клинична  биохимия  
Ако е приложимо , при определени  условия  се вземат  и се 
запазват  кръвните  проби  от избран  обект . В края  на 
изследването  пробите  се събират  точно  преди  или като част от 
процедурата  по умъртвяването  на животните . 
В края  на изследването  и когато  могат  да се съберат  някои  
промеждутъчни  кръвни  проби , се правят  и следните  хемат­  
ологични  изследвания : хематокрит , концентрация  на 
хемоглобин , брой  на еритроцитите , общ и отделен  брой  на левк­  
оцитите , брой  на тромбоцитите  и измерване  на времето  на 
съсирване /възможно . 
За да се изследват  основните  токсични  въздействия  върху  тъканите , 
и по-специално  въздействията  върху  бъбреците  и черния  дроб , 
върху  кръвните  проби , взети  от всяко  животно  точно  преди  или 
като част процедурата  по умъртвяване  на животните  (като част от 
тези, които  са намерени  умиращи  и/или междувременно  
умъртвени ), се извършват  клинични  биохимични  изследвания . По 
подобен  на хематологичните  изследвания  начин , може  между  
другото  да се вземат  проби  и за клиничен  биохимичен  тест. 
Препоръчва  се в нощта  преди  вземането  на кръвните  проби  да не 
се дава на животните  месо  за консумиране  ( 1 ). Изследванията  на 
плазма  и серум  следва  да включват  натрий , калий , глюкоза , 
холестероли , карбамид , хелио -азотен  карбамид , креатинин , 
протеини  и албумини  и повече  от два ензими , показващи  
чернодробно -клетъчно  въздействия  (като аланин  аминотранс­  
фераза , аспарат  аминотрансфераза , алкална  фосфатаза , гама  
глутамил  траспепидаза , сорбитолна  дехидрогеназа ). Може  да се 
включат  и изследвания  на с допълнителни  ензими  (на хепатит  
или с друг  произход ) и жлъчни  киселини , които  могат  да дадат  
полезна  информация  при определени  обстоятелства . 
По избор  през последната  седмица  от изследването  може  да се 
направят  изследвания  на урината , като се използва  синхронно  
събраното  количество  урина : външен  вид, количество , осмоза  и 
относително  тегло , рН, протеини , глюкоза  и кръв /кръвни  клетки . 
Като  допълнение  следва  да се предвидят  проучвания  на 
маркерите  за серума  на основните  увреждания  на тъканите . 
Други  изчисления  се извършват , ако познатите  свойства  на 
тестваното  вещество  могат  или се подозира , че могат  да възде­  
йстват  върху  съответните  метаболитни  профили  включително  
калций , фосфор , постни  триглицериди , специфични  хормони , 
метамоглобин  и холистераза . Тези  изчисления  е нужно  да се 
определят  за химикалите  от определени  класове  или въз 
основа  на всеки  отделен  случай . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 405  
( 1 ) За измерванията  на серума  и плазмата , и най-вече за глюкозата , се препоръчва  през 
нощта  да не се консумира  месо . Основната  причина  за това е нарасналата  проме­  
нливост , която  в резултат  от храненето  с месо  би могла  непредвидимо  да доведе  до 
лъжливи  ефекти  и до проблеми  при тълкуването . От друга  страна  обаче , липсата  на 
месо  през  нощта  въздейства  върху  метаболизма  на животните , и по-специално  при 
изследване  на храненето  може  да наруши  дневното  излагане  на веществото , което  
се изследва . Ако се възприеме  животното  да не се храни  с месо  през нощта  преди  
изследването , то клиничните  биохимични  изследвания  се извършват  след  
провеждането  на функционалните  наблюдения  по изследването
 Накрая  има нужда  от гъвкав  подход , в зависимост  от видовете  и 
от наблюдаваното  и/или очаквано  въздействие  от всяко  дадено  
вещество . 
Ако основните  сведения  са недостатъчни , следва  да се вземе  
предвид  дали  е необходимо  хематологичната  или клиничната  
биохимична  променливост  да се определят  преди  започване  на 
приемането  на дозите ; по принцип  не се препоръчва  тези данни  
да се генерират  преди  третирането  (7). 
1.5.2.3.  Обща  аутопсия  
Всички  животни , подложени  на експеримент , са обект  на пълна , 
подробна  аутопсия , която  включва  внимателен  преглед  на 
външната  повърхност  на тялото , всички  отвори  и мозъчната , 
гръдната  и коремната  кухини  и тяхното  съдържание . Черният  
дроб , бъбреците , надбъбречните  жлези , тестисите , епидимидите , 
матката , яйчниците , тимуса , далака , мозъка  и сърцето  на всички  
животни  (без тези, които  са намерени  заболели  и/или са 
междувременно  умъртвени ) се почистват  от полепналите  по 
тях тъкани , когато  е целесъобразно , и след  дисекцията  колкото  
е възможно  по-скоро  се измерва  тяхното  мокро  тегло  за да се 
избегне  изсушаването . 
Следните  тъкани  се запазват  при най-подходящата  
консервираща  среда  за вида  тъкан  и за очакваните  последващи  
хистопатологични  изследвания : общи  наранявания , мозък  
(представени  области  включващи  главен , малък  и костен  
мозък , гръбначен  мозък  (на три нива : шиен , среден  и лумбален ), 
хипофизна  жлеза , щитовидна  жлеза , паратироид , тимус , 
хранопровод , слюнчени  лимфни  жлези , стомах , дебели  и тънки  
черва  (включително  Пайеровите  плочки ), черен  дроб , панкреас , 
бъбреци , надбъбречните  жлези , далака , сърцето , трахеята  и 
белия  дроб  (запазени  чрез надуване  с фиксатор  и след  това 
потапяне  в течност ), аорта , гонадите , матката , вторични  
полови  органи , женски  млечни  жлези , простата , пикочен  
мехур , жлъчен  мехур  (мишка ), лимфни  възли  (за предпочитане  
един  лимфен  възел , по пътя  на приемането  и друг  по-далече  от 
него , за да се покрият  и систематичните  въздействия ), 
периферни  нерви  (седалище  и пищял ) за предпочитане  близо  
до мускул , разрез  на кост с костен  мозък  (и/или кост с 
изваден  костен  мозък ), кожата  и очите  (ако са наблюдавани  
изменения  по време  на офталмологичните  изследвания ). Клин­  
ичните  и другите  сведения  могат  да посочат  необходимостта  от 
допълнителни  изследвания  на тъканите . Всички  други  органи , 
които  на основата  на познатите  свойства  на тестваното  
вещество , се считат  за вероятни  обекти , също  се запазват . 
1.5.2.4.  Хистопатология  
Пълна  хистопатология  се извършва  на запазените  органи  и 
тъкани  на всички  животни  от контролните  групи  и групите  с 
висока  доза. Тези  прегледи  следва  да се приложат  и за 
животните  от всички  други  групи , получили  дозата , ако се набл­  
юдават  изменения  в резултат  от третирането  на групата  с най- 
високо  доза. 
Преглеждат  се всички  общи  наранявания . 
Когато  се използва  придружаваща  група , хистопатология  се 
извършва  на тъканите  и органите  с показано  въздействие  в 
третираните  групи . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 406
 
2. ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
2.1. ДАННИ  
Предоставят  се индивидуални  данни . Допълнително  се 
синтезират  данни  в таблична  форма , показваща  за всяка  
тествана  група  броя  на животните  при започване  на теста , 
броя  на животните , които  са открити  мъртви  по време  на 
изследването  или са били  умъртвени  и времето  на смъртта  или 
умъртвяването , броя  на проявените  признаци  на токсичност , 
описание  на признаците  на наблюдаваната  токсичност , включ­  
ително  времето  на започването , продължителността  и остротата  
на всички  токсични  въздействия , броя  на животните  с 
наранявания , вида  на нараняванията  и процента  на животните  
за всеки  отделен  вид нараняване . 
Когато  е необходимо , се оценяват  числовите  резултати  чрез 
използване  на подходящ  и основно  приемлив  статистически  
начин . Статистическите  методи  и данни , които  трябва  да се 
анализират , следва  да се избират  по време  на планирането  на 
изследването . 
2.2. ОТЧИТАНЕ  
Докладът  от проведеното  изследване  трябва  да включва  
следната  информация : 
2.2.1.  Веществото , което  се изследва : 
— физична  същност , чистота  и физико -химични  свойства , 
— идентификационни  данни , 
— разтвор  (ако е приложимо ): посочване  на причините  за избор  
на разтвор , различен  от водата . 
2.2.2.  Видове  животни , които  се тестват : 
— използвани  видове  и родове  животни , 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— произход , условия  на обитаване , хранителен  режим  и т.н., 
— индивидуално  тегло  на животните  при започването  на 
изследването . 
2.2.3  Условията , при които  се извършва  изследването : 
— рационален  избор  на нивото  доза, 
— подробности  за образуването /подготовката  на хранителния  
режим , постигнатата  концентрация , стабилност  и 
хомогенност  на разтвора , 
— подробности  за приемането  на тестваното  вещество , 
— действителната  доза (mg/kg дневно  телесно  тегло ) и фактора  
на конверсия  от концентрация  на тестваното  вещество  в 
хранителния  режим /питейната  вода  (ррm) към действит­  
елната  доза, ако е приложимо , 
— подробности  за качеството  на храната  и водата . 
2.2.4.  Резултати : 
— телесно  тегло  и промените  в него , 
— консумацията  на храна  и вода , ако е приложимо , 
— съответните  данни  за токсичността  според  пола  и нивото  
доза, включително  проявените  признаци  на токсичност , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 407
 
— същност , острота  и продължителност  на клиничните  набл­  
юдения  (обратими  или не), 
— резултатите  от офтолмологичните  наблюдения , 
— оценка  на сетивната  активност , силата  при хващане  и двигат­  
елната  активност  (когато  са налични ), 
— хематологични  тестове  със съответните  основни  стойности , 
— клинични  биохимични  тестове  със съответните  основни  
стойности , 
— телесно  тегло  при завършване  на експеримента , тегло  на 
органите  и съотношението  между  телесното  тегло  и 
теглото  на органите , 
— данни  от аутопсията , 
— подробно  описание  на всички  хистопатологични  сведения , 
— данни  от абсорбцията , ако са на разположение , 
— статистически  обработените  резултати , където  е приложимо . 
Обсъждане  на резултатите  
Заключения  
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) IPCS (1986). Principles and Methods for the Assessment of 
Neurotoxicity Associated with Exposure to Chemicals. Environ ­
mental Health Criteria Document No 60.  
(2) Tupper, D. E., Wallace, R.B. (1980). Utility of the Neurologic 
Examination in Rats. Acta Neurobiol. Exp., 40, pp. 999—1003.  
(3) Gad, S. C. (1982). A Neuromuscular Screen for Use in 
Industrial Toxicology. J. Toxicol. Environ. Health, 9, pp. 
691—704.  
(4) Moser, V. C, Mc Daniel, K. M., Phillips, P. M. (1991). Rat 
Strain and Stock Comparisons Using a Functional Observational 
Battery: Baseline Values and Effects of Amitraz. Toxicol. Appl. Pharmacol., 108, pp. 267—283.
 
(5) Meyer O. A., Tilson H. A., Byrd W. C, Riley M. T. (1979). A 
Method for the Routine Assesment of Fore- and Hind- limb grip Strength of Rats and Mice. Neurobehav. Toxivol., 1, pp. 233—236.
 
(6) Crofton K. M., Howard J. L., Moser V. C, Gill M. W., Reiter L. 
W., Tilson H. A., MacPhail R. C. (1991). Interlaboratory Comparison of Motor Activity Experiments: Implication for 
Neurotoxicological Assessments. Neurotoxicol. Teratol., 13, 
pp. 599—609.
 
(7) Weingand K., Brown G., Hall R. et al. (1996). „Harmonisation 
of Animal Clinic Pathology Testing in Toxicity and Safety 
Studies“, Fundam. & Appl. Toxicol., 29, pp. 198—201.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 408
 
Б.27. ИЗСЛЕДВАНЕ  НА СУБХРОНИЧНА  ОРАЛНА  
ТОКСИЧНОСТ  — 90-ДНЕВНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА ТОКСИЧ­  
НОСТТА  ПРИ  НЕ-ГРИЗАЧИ  С ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изследване  на субхроничната  орална  токсичност  е 
точно  копие  на ОECD TG 409 (1998).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
След  получаване  на предварителна  информация  върху  токсич­  
ността  при извършване  на 28-дневни  тестове  за акутна  и 
повторна  доза, при извършването  на оценка  и изчисляване  на 
токсичните  характеристики  на химикала  може  да се определи  
субхроничната  токсичност , използваща  повторна  дози . 90- 
дневното  изследване  предоставя  информация  за възможните  
рискове  за здравето , произтичащи  по всяка  вероятност  от 
повтарящото  се излагане  за периода  на бързо  порастване  и от 
младост  към зрелост . Това  изследване  предоставя  информация  
за основните  токсични  въздействия , посочва  засегнатия  орган  и 
възможността  за акумулиране , като може  да предостави  и 
оценка  на нивото  на ненаблюдаваните  неблагоприятни  възде­  
йствия  при излагане , която  може  да се използва  при определена  
доза за хронично  изследване  и за създаване  на критерии  за 
защита  при излагане  на хората . 
Този  метод  на тестване  позволява  идентификация  на вредните  
въздействия  от химичното  излагане  върху  видовете  не-гризачи  и 
следва  да се използва  само : 
— когато  наблюдаваните  въздействия  при други  проучвания  
показват  нуждата  от изясняване /характеризиране  при втори  
видове  не-гризачи , или 
— когато  токсикокинетичните  изследвания  показват , че 
употребата  на определени  видове  не-гризачи  е по- 
подходящият  избор  за лабораторно  животно , или 
— когато  други  специфични  причини  оправдават  използването  
на не-гризачи . 
Вж. също  Основно  въведение , част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Доза : е определено  количество  извлечено  вещество , дадено  за 
тестване . Дозата  се изразява  като тегло  (g, mg) или като тегло  на 
тестваното  вещество  върху  определена  единица  тегло  от 
тестваното  животно  (т.е. mg/kg), или като постоянни  диетични  
концентрации  (ррm). 
Дозировка : е обобщен  термин , който  включва  отделните  дози , 
тяхната  честота  и продължителност . 
NOAEL:  е абревиатура  за ниво  на ненаблюдавано  вредно  възде­  
йствие  и е най-дозираното  ниво , където  не се наблюдават  
вредни  резултати  от съответната  обработка . 
1.3. ПРИНЦИПИ  НА МЕТОДА  ЗА ТЕСТВАНЕ  
Веществото  за тестване  се приема  всекидневно  през устата  в 
последователни  дози  за няколко  групи  от експериментални  
животни , по една  доза за група  за период  от 90 дни. По време  
на периода  на предписването  животните  се наблюдават  отблизо  
за поява  на някакви  признаци  на токсичност . В края  на 
изследването  се прави  аутопсия  на животните , които  умират  
или са убити  по време  на извършването  на тестването , а 
оцелелите  животни  също  се умъртвяват  и се извършва  аутопсия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 409
 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ТЕСТВАНЕ  
1.4.1.  Избор  на видове  животни  
Обикновено  от не-гризачите  се използват  кучета , които  се 
отглеждат  при определени  условия ; най-често  се използват  
дребните  породи . Други  видове , като свине , минипрасета , 
също  могат  да се използват . Не се препоръчва  използването  на 
примати  и тяхното  използване  следва  да е обосновано . 
Използват  се млади  и здрави  животни , а когато  се използват  
кучета , дозата  следва  да се дава на 4—6-месечни  животни  и 
не по-късно  от деветия  месец  на първата  година . Когато  
изследването  се провежда  като предварително  по отношение  
на следващо  дългосрочно  хронично  изследване  на токсичността , 
и за двете  изследвания  следва  да се използват  животни  от същия  
вид и род. 
1.4.2.  Подготовка  на животните  
Използват  се млади  здрави  животни , които  са адаптирани  към 
лабораторните  условия  и не са били  обект  на предишни  
експериментални  процедури . Продължителността  на аклиматиз­  
ацията  ще зависи  от определените  за тестване  видове  и техния  
произход . Препоръчват  се поне  пет дни за кучетата  и специално  
отгледаните  за целта  свине  от постоянна  колония  и поне  две 
седмици  за другите  животни , ако са с друг  произход . 
Животните , използвани  за извършване  на теста , се определят  
според  вида , рода , произхода , пола , теглото  и/или възрастта . 
Животните  се разпределят  на случаен  принцип  в контролни  
групи  и групи  за обработване . Животните  се разпределят  на 
случаен  принцип  в контролни  групи  и групи  за обработване . 
Клетките  се подреждат  така, че да се сведат  до минимум  
възможните  влияния , получени  в резултат  от разположението  
на клетките . За всяко  животно  се определя  уникален  идентифик­  
ационен  номер . 
1.4.3.  Подготовка  на дозите  
Веществото  за тестване  се приема  през тръбичка  или чрез 
храната  или питейната  вода . Методът  на приемане  на 
веществото  през устата  се определя  в зависимост  от целите  на 
изследването  и физичните /химичните  свойства  на тествания  
материал . 
При необходимост  изследваното  вещество  се разтваря  или 
суспендира  в подходящ  разтворител . Където  е възможно , се 
препоръчва  първо  употребата  на воден  разтвор /суспензия , 
последвана  от петролен  разтвор /емулсия , след  това е възможен  
разтвор  с друг  разтворител . За разтворители , различни  от вода , 
следва  да се познават  токсичните  характеристики . Определя  се и 
устойчивостта  на тестваното  вещество  по време  на процеса  на 
извличане . 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1.  Брой  и пол на животните  
Поне  8 животни  (4 женски  и 4 мъжки ) следва  да се използват  
при всяко  ниво  на доза. Ако междувременно  се планира  убиване  
на животни  преди  завършването  на изследването , броят  се 
увеличава  в зависимост  от броя  на животните , които  е 
планирано  да бъдат  убити . Броят  на животните  при завършване  
на проучването  следва  да бъде  достатъчен  за даване  на 
съдържателна  оценка  на токсичните  въздействия . Въз основа  
на предишни  познания  върху  химикала  или върху  близък  до 
него  аналог  се разглежда  въпросът  относно  включването  на 
допълнителна  придружаваща  група  от 8 животни  (по четири  
от всеки  пол), поставени  в контролната  група  и в групата  с 
най-висока  доза за наблюдаване , след  периода  на третиране , на 
способността  за реверсиране  и устойчивостта  на всякакви  
токсични  въздействия . Продължителността  на периода  след  
обработката  се определя  с оглед  наблюдаваните  резултати . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 410
 
1.5.2.  Дозиране  
Използват  се поне  три нива  на доза и се осъществява  
едновременен  контрол , с изключение  на случаите , когато  се 
извършва  ограничен  тест (вж. 1.5.3.). Нивата  на дози  може  да 
са основани  на резултати  от повтаряща  се доза или обем  от 
сведения , получени  от проучвания , и следва  да се вземат  
предвид  всички  съществуващи  токсикологични  и токсикокин­  
етични  данни , които  са на разположение , за тестваното  
вещество  или съответните  материали . Освен  ограничението  от 
физикохимичната  природа  или биологичните  въздействия  на 
тестваното  вещество , най-високото  ниво  на дозата  се избира  с 
цел да се индуцира  токсичност , но не и смърт  или силно  
страдание . Избира  се намаляваща  последователност  на нивата  
на дозата  с оглед  да се покаже  всяка  ответна  на дозата  
реакция  и ненаблюдаваното  неблагоприятно  въздействие  
(NOAEL) на най-ниското  ниво  на дозата . Два до четири  
затворени  интервала  са най-често  оптимални  за поставяне  на 
намаляващите  нива  на дозата  и често  се предпочита  допълнение  
от четвърта  група  за тестване , за да се използват  големи  
интервали  (например  повече  от един  фактор  от около  6—10) 
между  дозирането . 
Контролната  група  е група , която  не е третирана  или група , 
която  контролира  разтворителя , при условие  че разтворителят  
се използва  при приемане  на веществото , което  се изследва . С 
изключение  на самата  обработка  с веществото , което  се 
изследва , животните  в контролната  група  се третират  по 
същия  начин  като тези от групите  за тестване . Ако се 
използва  разтворител , контролната  група  получава  най- 
високото  използвано  количество  от разтвора . Ако тестваното  
вещество  се приема  чрез хранителен  режим  и причини  
намалено  приемане  на храна , тогава  една  група , която  е на 
същия  хранителен  режим , при сверяване  може  да бъде  
полезна , за да се направи  разлика  между  намаляването , 
дължащо  се на липсата  на вкус  или вследствие  на токсик­  
ологични  изменения  при модела  за изследване . 
Когато  е целесъобразно , се разглеждат  следните  характеристики  
на разтвора  или други  адитивни  свойства : въздействия  върху  
абсорбцията , разпределението , метаболизма  или задържане  на 
веществото , което  се изследва ; въздействия  върху  химичните  
свойства  на веществото , което  се изследва , което  може  да 
измени  неговите  токсикологични  характеристики ; и въздействия  
върху  консумацията  на храна  и вода  или хранителния  статус  на 
животните . 
1.5.3.  Ограничен  тест 
Ако тестът  при едно  ниво  на доза, равно  на поне  1 000 mg/kg 
телесно  тегло  на ден, и при използване  на процедурите , описани  
за това изследване , води  до ненаблюдавани  неблагоприятни  
въздействия  и ако въз основа  на данни  от вещества , отнасящи  
се до структурата , не се очаква  токсичност , то пълното  
проучване  с използване  на трите  нива  дози  не може  да се 
счита  за необходимо . Прилага  се ограниченият  тест, с 
изключение  на случая , когато  излагането  на човека  подсказва  
нуждата  от използване  на по-високо  ниво  на доза. 
1.5.4.  Приемане  на дозите  
Животните  приемат  дозата  от тестваното  вещество  всеки  ден в 
продължение  на седем  дни, всяка  седмица  за периода  от 90 дни. 
Посочват  се причините  за използването  на всеки  друг  режим  на 
приемане  на дозата , например  5 дни. Когато  вещество  се приема  
при хранене  с тръбичка , това става , като една  доза се дава на 
животното  през стомашна  тръба  или подходяща  интубационна  
канюла . Максималното  количество  течност , което  може  да бъде  
прието  наведнъж , зависи  от размера  на тестваното  животно . 
Обикновено  количеството  се задържа  възможно  най-ниско . С 
цел да се осигури  постоянно  количество  на нивото  доза, проме­  
нливостта  на количеството  се намалява  до минимум  чрез 
регулиране  на концентрацията , освен  в случаите  на дразнещи  
и корозивни  вещества , които  нормално  ще показват  засилени  
въздействия  с висока  концентрация . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 411
 
За вещества , които  се приемат  чрез хранителен  режим  или вода  
за пиене , е важно  да се гарантира , че количеството  използвано  
за изследване  вещество  не въздейства  върху  нормалното  хранене  
и водния  баланс . Когато  тестваното  вещество  се приема  чрез 
хранителен  режим , може  да се използва  или постоянна  
хранителна  концентрация  (ррm), или постоянно  ниво  на доза 
от гледна  точка  на телесното  тегло  на животното ; следва  да се 
определи  и алтернативен  вариант  на употреба . За вещество , 
което  се приема  при хранене  с тръбичка , дозата  се дава по 
едно  и също  време  всеки  ден и е съобразена  в случаи  на необ­  
ходимост  да се поддържа  постоянно  ниво  доза с оглед  телесното  
тегло  на животното . Когато  90-дневното  изследване  се използва  
като предварително  по отношение  на дългосрочно  изследване  на 
хроничната  токсичност , и при двете  изследвания  следва  да се 
използва  един  и същ хранителен  режим . 
1.5.5.  Наблюдения  
Периодът  на наблюдение  е 90 дни. Животните  от 
придружаващата  група , които  са разпределени  за следващи  
наблюдения , се запазват  за подходящ  период , без да бъдат  
третирани  с цел да се уточни  устойчивостта  има или възста­  
новяването  от токсичността . 
Поне  един  път на ден се правят  основни  клинични  наблюдения , 
за предпочитане  по едно  и също  време , като се взема  предвид  
максималният  период  на предвидените  въздействия  след  
получаване  на дозата . Клиничните  условия , при които  живеят  
животните , се описват . Поне  два пъти  на ден, обикновено  в 
началото  и в края  на деня , всички  животни  се оглеждат  за 
проявени  признаци  на заболеваемост  или смъртност . 
Поне  един  път преди  първото  излагане  (с цел да е възможно  
сравнение  в рамките  на обекта ) и след  това поне  веднъж  в 
седмицата  на всички  животни  следва  да се правят  подробни  
клинични  изследвания . Тези  изследвания  следва  да се правят  
извън  клетката , която  обитава  животното , за предпочитане  в 
стандартна  обстановка  и във всички  случаи  по едно  и също  
време . Тези  изследвания  се описват  внимателно , за предп­  
очитане  се използват  изчислителни  системи , изрично  
определени  от лабораторията , която  извършва  теста . Полагат  
се необходимите  усилия , за да се гарантира , че променливостта  
в условията  за наблюдаване  е минимална . Забелязаните  
признаци  следва  да включват , но не се ограничават  само  със: 
изменения  в кожата , козината , очите , лигавиците , появяване  на 
секреция  и екскреция  и органична  независима  активност  
(например  лакримация , пилоерекция , размер  на зеницата , необ­  
икновена  респираторна  схема ). Записват  се също  и изменения  в 
походката , стойката  и чувствителността  при маневриране , както  
и наличието  на спазми  или свивания  на мускулите , стереотипа  
(например  остатъчно  дращене , повтарящо  се обикаляне  в кръг ) 
или странно  държание  (например  самоосакатяване , вървене  
назад ). 
Преди  приемането  на изследваното  веществото  и при прик­  
лючването  на изследването  се прави  офталмологичен  преглед  
чрез използване  на офталмоскоп  или равнозначно  подходящо  
оборудване , за предпочитане  на всички  животни , но поне  при 
групата  с най-високо  ниво  на доза и контролната  група . Ако се 
открият  изменения , очевидно  свързани  с третирането , всички  
животни  се подлагат  на преглед . 
1.5.5.1.  Телесно  тегло  и консумация  на храна /вода  
Теглото  на всички  животни  се измерва  поне  един  път в седм­  
ицата . Консумацията  на храна  също  се измерва  един  път 
седмично . Ако тестваното  вещество  се приема  чрез водата  за 
пиене , един  път в седмицата  се измерва  и консумацията  на 
вода . Консумацията  на вода  може  също  да се вземе  предвид  
за проучвания  на хранителния  режим  или при хранене  с 
тръбичка , когато  питейната  активност  може  да се измени . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 412
 
1.5.5.2.  Хематология  и клинична  биохимия  
Ако е приложимо , при определени  условия  се вземат  и се 
запазват  кръвни  проби  от избран  обект . В края  на изследването  
пробите  се събират  точно  преди  или като част от процедурата  
по умъртвяването  на животните . 
В началото  на изследването  и след  това или на интервали  от 
един  месец , или в средата  на периода  на извършване  на теста  и 
последно  в края  на този период  се правят  и следните  хемат­  
ологични  изследвания : хематокрит , концентрация  на 
хемоглобин , брой  на еритроцити , общ и отделен  брой  на левк­  
оцитите , брой  на тромбоцитите  и измерване  на възможността  на 
съсирване , като време  на съсирване  или протромбиново  време , 
или тромбопластиново  време . 
За да се изследват  основните  токсични  въздействия  върху  
тъканите , и по специално  въздействията  върху  бъбреците  и 
черния  дроб , върху  кръвните  проби , взети  от всяко  животно  в 
началото  и след  това или на интервали  от един  месец , или в 
средата  на периода  на извършване  на теста  и последно  в края  на 
този период , се извършват  клинични  биохимични  изследвания . 
Зоните , които  се изследват , са електролитният  баланс , 
карбохидратният  метаболизъм  и функциите  на черния  дроб  и 
бъбреците . Изборът  на специфичните  тестове  ще се повлияе  от 
вида  на действие  на тестваното  вещество . Препоръчва  се в 
нощта  преди  вземането  на кръвните  проби  да не се дава на 
животните  месо  за консумиране . Предложените  изчисления  
включват  калций , фосфор , хлор , натрий , калий , глюкоза , 
аланин  аминотрансфераза , аспарат  аминотрансфераза , орнитин  
декарбоксилаза , гама  глутамил  траспептидаза , карбамиден  азот, 
албумин , кръвен  креатинин , общ билирубин  и общи  изчисления  
на серумен  протеин . 
Поне  в началото  на изследването  и след  това в средата  на 
периода  на извършване  на теста  и последно  в края  на този 
период  време  на последната  седмица  от изследването  може  да 
се направят  изследвания  на урината , като се използва  синхронно  
събраното  количество  урина . Тези  изследвания  включват : 
външен  вид, количество , осмотичност  и относително  тегло , 
pH, протеини , глюкоза  и кръв /кръвни  клетки . Когато  е необ­  
ходимо , с оглед  разширяване  на проучването  върху  наблюда­  
ваните  въздействия , могат  да се използват  и допълнителни  
параметри . 
Като  допълнение  следва  да се предвиди  проучване  на знаците  за 
увреждане  на основните  тъкани . Други  изследвания , които  могат  
да са полезни  за адекватна  оценка  на токсичността , включват  
анализ  на липиди , хормони , киселинно -основен  баланс , 
метамоглобин  и холинестеразна  инхибиция . Може  да се 
извърши  допълнителна  биохимия , когато  е необходимо  да се 
разширят  проучванията  върху  наблюдаваните  въздействия . 
Тези  нужди  се определят  за химикалите  от определени  класове  
или въз основа  на всеки  отделен  случай . 
Накрая  има нужда  от гъвкав  подход , в зависимост  от видовете  и 
от наблюдаваното  и/или очакваното  въздействие  от всяко  дадено  
вещество . 
1.5.5.3.  Обща  аутопсия  
Всички  животни , подложени  на експеримент , са обект  на пълна , 
подробна  аутопсия , която  включва  внимателен  преглед  на 
външната  повърхност  на тялото , всички  отвори  и мозъчната , 
гръдната  и коремната  кухина  и тяхното  съдържание . Черният  
дроб  с жлъчния  мехур , бъбреците , надбъбречните  жлези , тест­  
исите , епидидимидите , матката , яйчниците , щитовидната  жлеза  
(с паратироидите ), тимусът , далакът , мозъкът  и сърцето  на 
всички  животни  (без тези, които  са намерени  умиращи  и/или 
са междувременно  умъртвени ) се почистват  от полепналите  по 
тях тъкани , когато  е приложимо , и след  дисекцията  колкото  е 
възможно  по-скоро  се измерва  тяхното  мокро  тегло , за да се 
избегне  изсушаването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 413
 
Следните  тъкани  следва  да бъдат  запазвани  при най- 
подходящата  консервираща  среда  за вида  тъкан  и за очакваните  
последващи  хистопатологични  изследвания : общи  наранявания , 
мозък  (представени  области , включващи  главен , малък  и костен  
мозък , гръбначен  мозък  (на три нива : шиен , среден  и лумбален ), 
хипофизна  жлеза , очи, щитовидна  жлеза , паратироид , тимус , 
хранопровод , слюнчени  лимфни  жлези , стомах , дебели  и тънки  
черва  (включително  Пайерови  плочки ), черен  дроб , жлъчен  
мехур , панкреас , бъбреци , надбъбречни  жлези , далак , сърце , 
трахея  и бял дроб , аорта , полови  жлези , матка , вторични  
полови  органи , женски  яйчни  жлези , простата , пикочен  мехур , 
лимфни  възли  (за предпочитане  един  лимфен  възел , по пътя  на 
приемането , и друг  по-далече  от него , за да се покрият  и сист­  
ематичните  въздействия ), периферни  нерви  (седалище  и пищял ), 
за предпочитане  близо  до мускул , разрез  на кост с костен  мозък  
(и/или кост с изваден  костен  мозък ), кожа  и очи (ако са набл­  
юдавани  изменения  по време  на офталмологичните  
изследвания ). Клиничните  и другите  сведения  могат  да 
посочат  необходимостта  от допълнителни  изследвания  на 
тъканите . Всички  други  органи , които  на основата  на 
познатите  свойства  на тестваното  вещество  се считат  за 
вероятни  обекти , също  следва  да бъдат  запазвани . 
1.5.5.4.  Хистопатология  
Пълна  хистопатология  следва  да се извършва  на запазените  
органи  и тъкани  на всички  животни  от контролните  групи  и 
групите  с висока  доза. Тези  прегледи  следва  да се приложат  и 
за животните  от всички  други  групи , получили  доза, ако се 
наблюдават  изменения  в резултат  от третирането  на групата  с 
най-висока  доза. 
Изследват  се всички  общи  наранявания . 
Когато  се използва  придружаваща  група , хистопатология  се 
извършва  на тъкани  и органи  с показан  ефект  при третираните  
групи . 
2. ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
2.1. ДАННИ  
Предоставят  се индивидуални  данни . Допълнително  се 
синтезират  данни  в таблична  форма , показваща  за всяка  
тествана  група  броя  на животните  при започване  на теста , 
броя  на животните , които  са открити  мъртви  по време  на 
изследването  или са били  умъртвени , и времето  на смъртта  
или умъртвяването , броя  на проявените  признаци  на токсичност , 
описание  на признаците  на наблюдаваната  токсичност , включ­  
ително  времето  на започването , продължителността  и остротата  
на всички  токсични  въздействия , броя  на животните  с 
наранявания , вида  на нараняванията  и процента  на животните  
за всеки  отделен  вид нараняване . 
Когато  е необходимо , числовите  резултати  следва  да се оценяват  
чрез използване  на подходящ  и общоприемлив  статистически  
метод . Статистическите  методи  и данни , които  следва  да се 
анализират , се избират  по време  на проектирането  на 
изследването . 
2.2. ОТЧИТАНЕ  
Докладът  от проведеното  изследване  следва  да включва  
следната  информация : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 414
 
2.2.1.  Вещество  за тестване  
— физична  същност , чистота  и физикохимични  свойства , 
— идентификационни  данни , 
— разтвор  (ако е приложимо ): посочване  на причините  за избор  
на разтвор , различен  от водата . 
2.2.2.  Видове  животни , с които  се извършва  тестването  
— използвани  видове  и родове  животни , 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— произход , условия  на обитаване , хранителен  режим  и т.н., 
— индивидуално  тегло  на животните  при започването  на 
изследването . 
2.2.3.  Условията , при които  се извършва  изследването  
— рационален  избор  на нивото  доза, 
— подробности  за образуването /подготовката  на хранителния  
режим , постигнатата  концентрация , стабилност  и 
хомогенност  на разтвора , 
— подробности  за приемането  на тестваното  вещество , 
— действителната  доза (mg/kg телесно  тегло  дневно ) и коеф­  
ициент  на пропорционалност  от хранителния  режим /­ 
питейната  вода  на концентрация  на тестваното  вещество  
(ррт) към действителната  доза, ако е приложимо , 
— подробности  за качеството  на храната  и водата . 
2.2.4.  Резултати : 
— телесно  тегло  и промените  в него , 
— консумацията  на храна  и вода , ако е приложимо , 
— съответните  данни  за токсичността  според  пола  и нивото  
доза, включително  проявените  признаци  на токсичност , 
— същност , острота  и продължителност  на клиничните  набл­  
юдения  (обратими  или не), 
— резултатите  от офталмологичните  наблюдения , 
— хематологични  тестове  със съответните  основни  стойности , 
— клинични  биохимични  тестове  със съответните  основни  
стойности , 
— телесно  тегло  при завършване  на експеримента , тегло  на 
органите  и съотношението  между  телесното  тегло  и 
теглото  на органите , 
— данни  от аутопсията , 
— подробно  описание  на всички  хистопатологични  сведения , 
— данни  от абсорбцията , ако са на разположение , 
— статистически  обработените  резултати , където  е приложимо . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 415
 
Б.28. ИЗПИТВАНЕ  ЗА СУБХРОНИЧНА  ДЕРМАЛНА  
ТОКСИЧНОСТ . 90-ДНЕВНИ  МНОГОКРАТНИ  ДЕРМАЛНИ  
ДОЗИ  ПРИ  ГРИЗАЧИ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Вижте  Общо  въведение , част Б. 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество  се прилага  ежедневно  върху  кожата , в 
нарастващи  дози , върху  няколко  групи  експериментални  
животни , по една  доза за група , в продължение  на 90 дни. По 
време  на прилагането  животните  се наблюдават  ежедневно , за да 
се открият  признаци  на токсичност . Животните , които  умират  по 
време  на изпитването , се подлагат  на аутопсия , а преживелите  
животни  се подлагат  на аутопсия  при приключване  на изпитването . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Животните  се държат  при експериментални  условия  на живот  и 
хранене  в продължение  поне  на пет дни преди  изпитването . 
Преди  изпитването  здрави  млади  животни  се избират  по 
случаен  признак  и се разпределят  в третирана  и контролна  
група . Малко  преди  изпитването  кожата  в дорзалната  област  
на туловището  на експерименталните  животни  се подстригва . 
Може  да се използва  бръснене , но то следва  да се извършва  
приблизително  24 часа преди  изпитването . Повторно  
подстригване  или бръснене  е необходимо  обикновено  през 
интервали  от една  седмица . Когато  козината  се подстригва  или 
бръсне , следва  да се внимава  да се избягва  ожулване  на кожата . 
Не по-малко  от 10 % от повърхността  на тялото  следва  да бъде  
подготвена  за прилагане  на изпитваното  вещество . Когато  се 
решава  каква  повърхност  следва  да бъде  подготвена  и какви  
да бъдат  размерите  на превръзката , следва  да се вземе  предвид  
теглото  на животното . Когато  се изпитват  твърди  вещества , 
които  при нужда  могат  да бъдат  стрити  на прах , изпитваното  
вещество  следва  да бъде  достатъчно  намокрено  с вода  или с 
подходящ  носител , когато  е необходимо , за да се осигури  
добър  контакт  с кожата . Течните  изпитвани  вещества  обик­  
новено  се използват  неразредени . Прилагането  е ежедневно , 
пет до седем  дни седмично . 
Условия  на изпитване  
Е к с п е р и м е н т а л н и ж и в о т н и 
Могат  да се използват  възрастни  плъхове , зайци  или морски  
свинчета . Могат  да се използват  други  видове , но употребата  
им трябва  да бъде  обоснована . При започване  на изпитването  
диапазонът  на колебание  на теглото  трябва  да бъде  ± 20 % от 
средното  тегло . Когато  изпитването  за субхронична  дермална  
токсичност  се провежда  като предварително  проучване  преди  
продължително  изпитване , и при двете  изпитвания  трябва  да 
се използват  същият  вид и порода . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 416
 
Б р о й и п о л 
За всяко  ниво  на дозиране  трябва  да се използват  поне  20 
животни  (10 женски  и 10 мъжки ) със здрава  кожа . Женските  
трябва  да са нераждали  и да не са бременни . Ако се планират  
междинни  жертви , броят  трябва  да бъде  увеличен  с броя  
животни , които  са планирани  за пожертване  преди  завършване  
на изпитването . Допълнително  една  сателитна  група  от 20 
животни  (по 10 животни  от пол) може  да бъде  третирана  при 
високо  ниво  на дозиране  в продължение  на 90 дни и да бъде  
наблюдавана  в продължение  на 28 дни след  третирането  за 
обратимост , запазване  или забавена  проява  на токсични  ефекти . 
Н и в а н а д о з и р а н е 
Необходими  са поне  три нива  на дозиране  с контрол  или 
контрол  за носителя , ако се използва  носител . Експозицията  
трябва  да продължава  поне  по шест  часа дневно . Прилагането  
на изпитваното  вещество  трябва  да се извършва  по едно  и също  
време  всеки  ден и количеството  на прилаганото  вещество  трябва  
да бъде  коригирано  през определени  интервали  (от една  или две 
седмици ), за да се поддържа  постоянно  ниво  на дозиране  по 
отношение  на телесното  тегло  на животното . Освен  третирането  
с изпитваното  вещество , животните  от контролната  група  трябва  
да бъдат  третирани  по идентичен  начин  с животните  от 
изпитваните  групи . Когато  за подпомагане  на дозирането  се 
използва  помощно  вещество , дозирането  на контролната  група  
с носител  трябва  да бъде  същото , както  при третираните  групи , 
и контролната  група  трябва  да получава  същото  количество  
носител , като това, което  получава  групата  на най-висока  доза. 
Най-високото  ниво  на дозиране  трябва  да води  до токсични  
ефекти , но да не предизвиква  или да предизвиква  малък  брой  
фатални  изходи . Най-ниското  ниво  на дозиране  не трябва  да 
предизвиква  никакви  признаци  на токсичност . Когато  
съществува  оценка  на експозицията  при хора , която  може  да 
се използва , най-ниското  ниво  на дозиране  трябва  да е по- 
високо . В идеалния  случай , междинното  ниво  на дозиране  
трябва  да предизвиква  минимални  видими  токсични  ефекти . 
Ако се използва  повече  от една  междинна  доза, нивата  на 
дозиране  трябва  да бъдат  разделени  едно  от друго , така че да 
се получи  градиране  на токсичните  ефекти . При групите  на 
ниска  и междинни  дози  и при контролните  групи , честотата  на 
фаталните  изходи  трябва  да бъде  ниска , така че да позволи  
значима  оценка  на резултатите . 
Ако прилагането  на изпитваното  вещество  води  до силно  кожно  
дразнене , концентрациите  трябва  да бъдат  намалени  и това може  
да доведе  до намаляване  или липса  на други  токсични  ефекти  
при високото  ниво  на дозиране . Ако кожата  е силно  увредена , 
може  да се наложи  прекратяване  на изпитването  и предприемане  
на ново  изпитване  при по-ниска  концентрация . 
Гранично  изпитване  
Може  да се приеме , че допълнително  изпитване  не е необ­  
ходимо , ако е известно , че предварително  проучване  при доза 
1 000 мг/кг или по-висока , която  е свързана  с възможна  
експозиция  при хора , не предизвиква  токсични  ефекти . 
Период  на наблюдение  
Експерименталните  животни  трябва  ежедневно  да бъдат  набл­  
юдавани  за признаци  на токсичност . Трябва  да се регистрират  
времето  на смъртта  и времето , по което  се появяват  и изчезват  
признаците  на токсичност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 417
 
Процедура  
Животните  трябва  да бъдат  настанени  в индивидуални  клетки . В 
идеалния  случай  животните  се третират  с изпитваното  вещество  
седем  дни в седмицата  в продължение  на 90 дни. 
Животните  от всяка  сателитна  група , планирана  за контролни  
наблюдения , трябва  да бъдат  гледана  в продължение  на допълн­  
ителни  28 дни без третиране , за да бъдат  открити  възста­  
новяването  от токсичните  ефекти  или запазването  им. Експоз­  
ицията  трябва  да продължава  шест  часа на ден. 
Изпитваното  вещество  трябва  да бъде  прилагано  по еднакъв  
начин  върху  площ , която  представлява  приблизително  10 % от 
общата  площ  на телесната  повърхност . При силно  токсични  
вещества  покритата  повърхностна  площ  може  да бъде  по- 
малка , но колкото  е възможно  по-голяма  площ  трябва  да бъде  
покрита  с тънък  и еднакъв  филм . 
При експозицията  изпитваното  вещество  се поддържа  в контакт  
с кожата  с помощта  на пореста  марлена  превръзка  и недразнеща  
лента . Изпитваното  място  трябва  да бъде  допълнително  покрито  
по подходящ  начин , така че марлената  превръзка  и изпитваното  
вещество  да се запазят  и животните  да не могат  да погълнат  
изпитваното  вещество . За да бъде  предотвратено  поглъщането  
на изпитваното  вещество , могат  да се използват  ограничаващи  
средства , но пълно  обездвижване  не се препоръчва . 
В края  на експозицията  останалото  изпитвано  вещество  трябва  
да бъде  отстранено , когато  е възможно , с помощта  на вода  или 
друг  подходящ  метод  за почистване  на кожата . 
Всички  животни  трябва  да бъдат  наблюдавани  ежедневно  и 
признаците  на токсичност  да бъдат  регистрирани , включително  
времето  им на настъпване , силата  и продължителността  им. 
Наблюденията  в клетките  трябва  да включват  измененията  на 
кожата  и козината , очите  и лигавиците , а също  дихателната , 
сърдечно -съдовата , автономната  и централната  нервна  система , 
соматомоторната  активност  и начина  на поведение . Трябва  да се 
извършват  ежеседмични  измервания  на консумираната  храна  и 
животните  да се претеглят  всяка  седмица . Редовните  набл­  
юдения  на животните  са необходими , за да не се губят  
животни  при изпитването  поради  причини  като канибализъм , 
тъканна  автолиза  или преместване . В края  на периода  на 
изпитването  всички  оживели  животни  от несателитните  
третирани  групи  се подлагат  на аутопсия . Умиращите  животни  
трябва  да бъдат  отстранени  и подложени  на аутопсия , когато  
бъдат  забелязани . 
На всички  животни , включително  контролните , обичайно  се 
правят  следните  прегледи : 
а) Преди  експозицията  на изпитваното  вещество  и при преуста­  
новяване  на изпитването  трябва  да се проведе  
офталмологичен  преглед  с помощта  на офталмоскоп  или 
еквивалентно  подходящо  оборудване , за предпочитане  при 
всички  животни , но поне  в групите  на висока  доза и 
контролните  групи . Ако бъдат  доловени  очни  изменения , 
трябва  да бъдат  прегледани  всички  животни . 
б) В края  на изпитването  трябва  да бъде  направено  хемат­  
ологично  изследване , включващо  хематокрита , конце­  
нтрацията  на хемоглобина , броя  на еритроцитите , общия  
брой  на левкоцитите  и диференциалното  им броене  и 
измерване  на потенциала  за съсирване , например  време  на 
съсирване , протромбиново  време , тромбопластиново  време  
или брой  на тромбоцитите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 418
 
в) В края  на изпитването  трябва  да се определят  клиничните  
биохимични  параметри  на кръвта . изследвания , които  се 
смятат  за целесъобразни  при всички  изпитвания , са електрол­  
итният  баланс , въглехидратният  метаболизъм  и 
чернодробната  и бъбречната  функция . Изборът  на 
конкретни  изследвания  ще се повлияе  от наблюденията  
върху  механизма  на действие  на веществото . Предложени  
са параметрите  калций , фосфор , хлориди , натрий , калий , 
глюкоза  на гладно  (с период  на гладуване , подходящ  за 
вида ), серумна  глутамат  пируват  трансаминаза  ( 1 ), серумна  
глутамат  оксалоацетат  трансаминаза  ( 2 ), орнитин  декарбокс­  
илаза , гама  глутамил  транспептидаза , уреен  азот, албумин , 
креатинин  в кръвта , общ билирубин  и общ серумен  белтък . 
Други  параметри , които  може  да са необходими  за адекватна  
токсикологична  оценка , включват  анализ  на липиди , 
хормони , киселинно /алкално  равновесие , метхемоглобин  и 
холинестеразна  активност . Когато  е необходимо  да бъде  
разширено  изпитването  на наблюдаваните  ефекти , може  да 
се използват  допълнителни  клинични  биохимични  параметри . 
г) Изследване  на урина  рутинно  не е необходимо , а само  когато  
съществуват  показания  поради  очаквана  или наблюдавана  
токсичност . 
Ако историческите  изходни  данни  не са адекватни , трябва  да се 
има предвид  определяне  на хематологичните  параметри  и на 
параметрите  на клиничната  биохимия  преди  да започне  
дозирането . 
М а к р о с к о п с к а а у т о п с и я 
Всички  животни  трябва  да бъдат  подложени  на пълна  
макроскопска  аутопсия , която  включва  преглед  на външната  
повърхност  на тялото , всички  отвори , и на черепната , гръдната  
и коремната  кухина  и съдържанието  им. Черният  дроб , 
бъбреците , надбъбречните  жлези  и тестисите  трябва  да бъдат  
претеглени  във влажно  състояние  колкото  е възможно  по- 
бързо  след  дисекцията , за да се избегне  изсъхването  им. 
Следните  органи  и тъкани  трябва  да бъдат  съхранени  в 
подходяща  среда  за възможно  бъдещо  хистопатологично  
изследване : всички  макроскопски  лезии , мозъкът  — включ­  
ително  срези  на продълговатия  мозък /моста , кората  на малкия  
мозък  и главния  мозък , хипофизата , щитовидната /­ 
паращитовидните  жлези , пялата  тимусна  тъкан  (трахеята ), 
белите  дробове , сърцето , аортата , слюнчените  жлези , черният  
дроб , слезката , бъбреците , надбъбречните  жлези , панкреасът , 
гонадите , матката , допълнителните  полови  органи , жлъчният  
мехур  (ако е налице ), хранопроводът , стомахът , дванадесет­  
опръстникът , празното  черво , хълбочното  черво , сляпото  
черво , ободното  черво , правото  черво , пикочният  мехур , 
представителен  лимфен  възел , (женската  млечна  жлеза ), 
(бедрена  мускулатура ), периферен  нерв , (очи), (гръдна  кост с 
костен  мозък ), (бедрена  кост, включително  ставна  повърхност ), 
(гръбначен  мозък  на три нива  — шийно , гръдно  и поясно ) и 
(извънорбитните  слъзни  жлези ). Тъканите , посочени  в скоби , 
трябва  да се изследват  само , ако въз основа  на признаци  на 
токсичност  или ангажиране  на целевите  органи  са налице  
показания  за това. 
Х и с т о п а т о л о г и ч н о и з с л е д в а н е 
а) Пълно  хистопатологично  изследване  трябва  да се извършва  
на нормалната  и третираната  кожа  и на органи  и тъкани  на 
животни  от контролната  група  и групата  на висока  доза. 
б) Всички  макроскопски  лезии  трябва  да бъдат  изследвани . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 419  
( 1 ) Сега  известна  като серумна  аланин  аминотрансфераза . 
( 2 ) Сега  известна  като серумна  аспартат  аминотрансфераза .
 в) Целевите  органи  трябва  да бъдат  изследвани  и в групите  на 
други  дози . 
г) Когато  се използват  плъхове , белите  дробове  на животните  от 
групите  на ниска  и междинна  доза трябва  да бъдат  
подложени  на хистопатологично  изследване  за признаци  на 
инфекция , тъй като това дава възможност  за лесно  оценяване  
на здравословното  състояние  на животните . При животни  от 
тези групи  допълнително  хистопатологично  изследване  може  
рутинно  да не е необходимо , но в групата  на висока  доза то 
винаги  трябва  да се извършва  върху  органите , при които  са 
налице  данни  за лезии . 
д) Когато  се използва  сателитна  група , трябва  да се прави  хист­  
опатологично  изследване  на тъканите  и органите , при които  
се наблюдават  ефекти  в другите  третирани  групи . 
2. ДАННИ  
Данните  трябва  да бъдат  обобщени  в табличен  вид, като за всяка  
изпитвана  група  са показани  броят  на животните  в началото  на 
изпитването , броят  на животните , при които  са налице  лезии , 
типът  на лезиите  и процентът  на животните , които  демонстрират  
всеки  тип лезия . Резултатите  трябва  да бъдат  оценени  с помощта  
на подходящ  статистически  метод . Може  да се използва  всеки  
признат  статистически  метод . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— вид, порода , източник , условия  на околната  среда , диета , 
— условия  на изпитването , 
— нива  на дозиране  (включително  носител , ако е използван ) и 
концентрации , 
— данни  за токсичния  отговор  по пол и доза, 
— ниво  без ефект , където  е възможно , 
— време  на смъртта  по време  на изпитването  или дали  
животните  са оживели  до прекратяването  му, 
— описание  на токсичните  или други  ефекти , 
— времето  на наблюдение  на всеки  абнормен  признак  и 
неговото  последващо  развитие , 
— данни  за храната  и телесното  тегло , 
— резултати  от офталмологичното  изследване , 
— използвани  хематологични  изследвания  и всички  резултати , 
— използвани  клинични  биохимични  изследвания  и всички  
резултати  (включително  резултати  от всички  изследвания  
на урина ). 
— резултати  от аутопсията , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 420
 
— подробно  описание  на всички  резултати  от хистопатолог­  
ичните  изследвания , 
— статистическа  обработка  на резултатите , където  е възможно , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите , 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
4. Препратки  
Вижте  Общо  въведение  част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 421
 
Б.29. СУБХРОНИЧНА  ИНХАЛАТОРНА  ТОКСИЧНОСТ : 90-ДНЕВНО  
ИЗСЛЕДВАНЕ  
РЕЗЮМЕ  
Настоящият  преработен  метод  за изпитване  Б.29. е разработен , за да се 
характеризира  напълно  токсичността  на изпитвани  химикали  по инхал­  
аторен  път за субхронична  продължителност  (90 дни), и да се осигурят  
устойчиви  данни  за количествени  оценки  на риска  при инхалация . Групи  
от 10 мъжки  и 10 женски  гризачи  се експонират  6 часа на ден в продъ­  
лжение  на 90 дни (13 седмици ) а) на изпитвания  химикал  на три или повече  
равнища  на концентрация , б) на филтруван  въздух  (отрицателна  контрола ), 
и/или в) на носителя  (контрол  върху  носителя ). Животните  обикновено  се 
експонират  5 дни седмично , но експозиция  за 7 дни в седмицата  също  е 
позволена . Винаги  се изпитват  мъжки  и женски  животни , но те могат  да 
бъдат  експонирани  при различни  равнища  на концентрация , ако е известно , 
че единият  пол е по-възприемчив  на даден  изпитван  химикал . Настоящият  
метод  дава възможност  на ръководителя  на изследването  да включва  
сателитни  (за обратимост ) групи , междинни  умъртвявания , бронхоалв­  
еоларен  лаваж  (БАЛ ), неврологични  изпитвания  и допълнителна  клинична  
патология  и хистопатологични  оценки  за по-добро  характеризиране  на токс­  
ичността  на даден  изпитван  химикал . 
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
413 на ОИСР  (2009 г.). Първоначалното  Указание  за изпитване  за 
субхронична  инхалаторна  токсичност  413 (TG 413) е прието  през 
1981 година  (1). Настоящият  метод  Б.29. (като равностоен  на преразг­  
леданото  TG 413 (2009)) е актуализиран , така че да отразява  
състоянието  на науката  и с оглед  посрещане  на настоящите  и бъдещи  
регулаторни  нужди . 
2. Изследванията  за субхронична  инхалаторна  токсичност  се използват  
преди  всичко  за извеждане  на регулаторни  концентрации  за оценка  
на риска  за работниците  при професионални  занимания . Те също  се 
използват  за оценяване  на риска  за човека  в жилището , в транспортния  
сектор  и риска  за околната  среда . Настоящият  метод  дава възможност  
за характеризиране  на неблагоприятни  ефекти  вследствие  на повтаряща  
се ежедневна  експозиция  чрез инхалация  на изпитван  химикал  в продъ­  
лжение  на 90 дни (приблизително  10 % от продължителността  на 
живота  на плъховете ). Данните , получени  от изследванията  за 
субхронична  инхалаторна  токсичност , могат  да се използват  за колич­  
ествена  оценка  на риска  и за избор  на концентрации  за изследвания  на 
хронична  токсичност . Настоящият  метод  за изпитване  не е специално  
предназначен  за изпитване  на наноматериали . Определенията , 
използвани  в контекста  на настоящия  метод  за изпитване , са дадени  
в края  на тази глава  и в Ръководство  GD 39 (2).  
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
3. Цялата  налична  информация  за изпитвания  химикал  следва  да бъде  
разгледана  от лабораторията , извършваща  изпитвания , преди  
провеждане  на изследването  с цел повишаване  качеството  на 
изследването  и свеждане  до минимум  на използването  на животни . 
Информация , която  ще допринесе  за избор  на подходящи  конце­  
нтрации  на изпитване , може  да включва  данни  за идентификацията , 
химична  структура  и физични  и химични  свойства  на изпитвания  
химикал ; резултатите  от всякакви  изпитвания  за токсичност , 
извършени  in vitro  или in vivo ; очаквани  употреби  и потенциал  за 
експозиция  на човека ; налични  данни  за (количествена ) зависимост  
структура -активност  и токсикологични  данни  за химикали  със сходна  
структура ; и данни , получени  от други  изследвания  при повтаряща  се 
експозиция . Ако в хода  на изследването  се очаква  или се наблюдава  
невротоксичност , ръководителят  на изследването  може  да предпочете  
да включи  подходящи  оценки  като например  батерия  от функционални  
изпитвания  (FOB) и измерване  на двигателната  активност . Въпреки  че 
моментът  на експозициите  по отношение  на специфични  изследвания  
може  да бъде  от решаващо  значение , изпълнението  на тези допълн­  
ителни  дейности  не следва  да пречи  на основния  план  на изследването . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 422
 
4. Разредени  разтвори  на корозивни  или дразнещи  изпитвани  химикали  
могат  да се изпитват  при концентрации , които  ще доведат  до желаната  
степен  на токсичност . Моля  вижте  GD 39 (2) за допълнителна  
информация . При експониране  на животни  на тези материали  
целевите  концентрации  трябва  да са достатъчно  ниски , за да не 
причиняват  видима  болка  и дистрес , но също  така да са достатъчни  
за да се разшири  обхватът  на кривата  концентрация -отговор  до 
равнища , при които  се постигат  регулаторната  и научната  цели  на 
изпитването . Тези  концентрации  следва  да бъдат  подбирани  въз 
основа  на конкретен  случай , за предпочитане  въз основа  на 
планирано  по подходящ  начин  изследване  за определяне  на обхвата , 
предоставящо  информация  за критичната  крайна  точка , за всякакъв  
праг  на дразнене  и за времето  на поява  (вж. точки  11—13). Следва  
да се предостави  обосновка  за избора  на концентрацията . 
5. Умиращите  животни , както  и животните , които  очевидно  изпитват  
болка  или показват  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , 
следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  начин . Умиращите  животни  
се разглеждат  по същия  начин , както  животните , умрели  по време  на 
изпитването . Критериите  за вземане  на решение  за умъртвяване  на 
умиращи  или силно  страдащи  животни  и указанията  за разпознаване  
на предвидима  или неизбежна  смърт  са предмет  на Ръководство  на 
ОИСР  за хуманен  край  (3). 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
6. Използват  се здрави  млади  полово  зрели  гризачи  от обичайно  
използваните  за лабораторни  изследвания  породи . Предпочитаният  
вид е плъхът . Използването  на други  животински  видове  следва  да 
бъде  обосновано . 
Подготовка  на животните  
7. Женските  индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . В 
деня  на подбора  на случаен  принцип  животните  следва  да бъдат  млади  
полово  зрели  индивиди  на възраст  от 7 до 9 седмици . Телесните  тегла  
следва  да бъдат  в рамките  на ± 20 % от средното  тегло  за всеки  пол. 
Животните  се избират  произволно , маркират  се, за да е възможно  
индивидуалното  им идентифициране , и се държат  в техните  клетки  
поне  5 дни преди  започване  на изпитването , за да се даде  възможност  
за аклиматизиране  към лабораторните  условия . 
Отглеждане  на животни  
8. Всяко  животно  се идентифицира  отделно , по възможност  с подкожни  
транспондери , за да се улеснят  наблюденията  и да се избегне  
объркване . Температурата  на помещението , в което  се отглеждат  
опитните  животни , следва  да бъде  22 ± 3 °C. В идеалния  случай  относ­  
ителната  влажност  следва  да бъде  поддържана  в интервала  от 
30—70 %, макар  че поддържането  в този интервал  може  да не е 
възможно , когато  се използва  вода  като носител . Преди  и след  експоз­  
ициите  животните  обичайно  следва  да се поставят  в клетките  в групи  
по пол и концентрация , но броят  на животните  в дадена  клетка  не 
следва  да възпрепятства  точните  наблюдения  над всяко  животно  и 
следва  да свежда  до минимум  загубите  поради  канибализъм  и борба . 
За животни , при които  експозицията  е само  през носа , може  да е 
необходимо  същите  да бъдат  аклиматизирани  към ограничителните  
тръби . Ограничителните  тръби  не следва  да причиняват  ненужен  
стрес  у животните  поради  физични , термични  или причини , свързани  
с обездвижване . Ограничаването  може  да засегне  физиологични  крайни  
точки  като телесната  температура  (хипертермия ) и/или минутния  
дихателен  обем . Ако са налични  типови  данни , които  показват , че не 
настъпват  такива  осезаеми  промени , тогава  не е необходимо  
предварително  адаптиране  към ограничителните  тръби . Животни , при 
които  експозицията  на аерозол  е на цялото  тяло , следва  да се 
настаняват  отделно  по време  на експозицията , за да се предотврати  
възможността  животното  да филтрува  изпитвателния  аерозол  през 
козината  на намиращи  се в същата  клетка  други  животни . Освен  по 
време  на експозицията , могат  да се използват  конвенционални  и 
сертифицирани  лабораторни  храни , придружени  с неограничено  
количество  битова  питейна  вода . Осветлението  трябва  да бъде  
изкуствено , като последователността  е 12 часа светлина /12 часа 
тъмнина . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 423
 
Инхалационни  камери  
9. При избора  на инхалационна  камера  следва  да бъдат  разгледани  
естеството  на изпитвания  химикал  и целта  на изпитването . Предпоч­  
итаният  начин  на експозиция  е само  през носа  (в този термин  се 
включват  експозиции  само  на главата , само  през носа  или само  през 
муцуната ). Експозицията  само  през носа  обичайно  се предпочита  при 
изследване  на течни  и твърди  аерозоли , както  и на пари , които  могат  да 
кондензират  с образуване  на аерозоли . Специалните  цели  на 
изследването  могат  да се постигнат  по-добре  чрез използване  на 
режим  на експозиция  на цялото  тяло , но това следва  да бъде  обос­  
новано  в доклада  от изследването . За да се гарантира  стабилност  на 
атмосферата  при използване  на камера  за експозиция  на цялото  тяло , 
общият  обем  на изпитваните  животни  не трябва  да надвишава  5 % от 
обема  на камерата . Принципите  на техниките  за експозиция  само  през 
носа  и за експозиция  на цялото  тяло  и техните  специфични  предимства  
и недостатъци  са описани  в GD 39 (2).  
ИЗСЛЕДВАНИЯ  НА ТОКСИЧНОСТТА  
Пределни  концентрации  
10. За разлика  от изследванията  за остра  токсичност , при изследванията  за 
субхронична  инхалаторна  токсичност  няма  определени  пределни  конце­  
нтрации . За максималната  изпитвана  концентрация  следва  да се вземе  
предвид : 1) максимално  достижимата  концентрация , 2) нивото  на 
експозиция  на човека  при „най-лошия  случай “ 3) необходимостта  от 
поддържане  на подходящо  подаване  на кислород , и/или 4) съображения , 
свързани  с хуманното  отношение  към животните . При отсъствието  на 
ограничения , основаващи  се на данни , могат  да бъдат  използвани  
границите  за остра  токсичност  по Регламент  (ЕО) № 1272/2008 (13) 
(т.е. до максимална  концентрация  от 5 mg/l за аерозоли , 20 mg/l за 
пари  и 20 000 ppm за газове ); вж. GD 39 (2). Трябва  да се представи  
обосновка , ако е необходимо  превишаване  на тези граници  при 
изпитване  на газове  или силно  летливи  изпитвани  химикали  (напр . 
хладилни  агенти ). Пределната  концентрация  трябва  да разкрива  токс­  
ичност  по категоричен  начин , без да води  до неоправдан  стрес  за 
животните  и без да влияе  на продължителността  на живота  им (3). 
Изследване  за определяне  на обхвата  
11. Преди  началото  на основното  изследване  обичайно  е необходимо  да се 
извърши  изследване  за определяне  на обхвата . Изследването  за 
определяне  на обхвата  е по-обширно  от зрителното  изследване , тъй 
като не е ограничено  до избора  на концентрация . Познанията , 
получени  при изследването  за определяне  на обхвата , могат  да 
доведат  до успешно  основно  изследване . Изследването  за определяне  
на обхвата  може  например  да предостави  техническа  информация  за 
дадено  основно  изследване  по отношение  на методите  за анализ , 
определянето  на размера  на частиците , откриването  на механизми  на 
токсичност , данните  от клиничната  патология  и хистопатологията , и 
оценките  на вероятните  равнища  на NOAEL и на максималната  
допустима  концентрация . Ръководителят  на изследването  може  да 
избере  да използва  изследването  за определяне  на обхвата  за уста­  
новяване  на прага  на дразнене  на дихателните  пътища  (напр . с хист­  
опатологично  изследване  на дихателните  пътища , изпитване  на 
белодробната  функция  или бронхоалвеоларен  лаваж ), на горната  
гранична  стойност  на концентрацията , която  се понася  без излишен  
стрес  за животните , и на параметрите , които  най-добре  характеризират  
токсичността  на даден  изпитван  химикал . 
12. Изследването  за определяне  на обхвата  може  да включва  едно  или 
повече  равнища  на концентрация . В зависимост  от избраните  крайни  
точки , при всяко  равнище  на концентрация  следва  да бъдат  
експонирани  три до шест  мъжки  и три до шест  женски  животни . 
Изследването  за определяне  на обхвата  трябва  да продължи  най- 
малко  5 дни и по принцип  не повече  от 28 дни. Обосновката  за 
избора  на концентрации  за основното  изследване  следва  да бъде  предо­  
ставена  в доклада  от изследването . Целта  на основното  изследване  е да 
покаже  взаимовръзката  концентрация -отговор  въз основа  на това, което  
се очаква  да е най-чувствителната  крайна  точка . Ниската  концентрация  
в идеалния  случай  е концентрация  без наблюдаван  неблагоприятен  
ефект , докато  високата  концентрация  трябва  да разкрива  токсичност  
по категоричен  начин , без да води  до неоправдан  стрес  за животните  
и без да влияе  на продължителността  на живота  им (3). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 424
 
13. При избор  на равнища  на концентрация  за изследването  за определяне  
на обхвата  цялата  достъпна  информация  трябва  да бъде  разгледана , 
включително  зависимостите  структура -активност  и данните  за 
подобни  химикали  (вж. точка  3). Дадено  изследване  за определяне  на 
обхвата  може  да потвърди /отхвърли  считаните  за най-чувствителни  
механистично  определени  крайни  точки , напр . подтискане  на холин­  
естеразата  от органични  фосфати , образуване  на метхемоглобин  от 
еритроцитотоксични  агенти , тиреоидни  хормони  (T  3 , T  4 ) за тиреот­  
оксиканти , белтъци , лактатдехидрогеназа  или неутрофили  в бронхоалв­  
еоларен  лаваж  за безвредни  малко  разтворими  частици  или аерозоли  с 
дразнещо  действие  върху  белите  дробове . 
Основно  изследване  
14. Основното  изследване  за субхронична  токсичност  обичайно  включва  
три равнища  на концентрация , а също  и паралелни  отрицателни  
(въздух ) контроли  и/или контроли  на носителя , ако е необходимо  
(вж. точки  18). Всички  налични  данни  следва  да бъдат  използвани  за 
подпомагане  на избора  на подходящи  нива  на експозиция , включително  
резултатите  от изследванията  за систематична  токсичност , на мета­  
болизма  и на кинетиката  (следва  да се обърне  специално  внимание  
на избягване  на високите  равнища  на концентрация , които  насищат  
кинетичните  процеси ). Всяка  изпитвана  група  се състои  от 10 мъжки  
и 10 женски  гризачи , които  се експонират  на изпитвания  химикал  в 
продължение  на 6 часа всеки  ден 5 дни в седмицата  за срок  от 13 
седмици  (обща  продължителност  на изследването  най-малко  90 дни). 
Животните  могат  да бъдат  експонирани  7 дни в седмицата  (напр . при 
изпитване  на инхалирани  фармацевтични  продукти ). Ако е известно , че 
единият  от половете  е по-възприемчив  към даден  изпитван  химикал , 
двата  пола  могат  да бъдат  експонирани  на различни  равнища  на конце­  
нтрация , за да се оптимизира  отношението  концентрация -отговор , 
както  е описано  в точки  15. Ако експозиция  на вид гризач , различен  
от плъх , е само  през носа , максималната  продължителност  на експоз­  
ицията  може  да бъде  адаптирана  така, че да се минимизира  специф­  
ичният  за този вид дистрес . Трябва  да бъде  предоставена  обосновка  
при използване  на продължителност  на експозицията  по-малка  от 6 
часа дневно , или когато  е необходимо  да се проведе  изследване  с 
експозиция  на цялото  тяло  с голяма  продължителност  (например  22 
часа/ден) (вж. GD 39) (2). Храна  не следва  да се предоставя  по време  
на периода  на експозиция , освен  ако експозицията  надвишава  6 часа. 
Вода  може  да се дава по време  на експозиция  на цялото  тяло . 
15. При подбраните  целеви  концентрации  следва  да бъде  идентифициран  
прицелният  орган (и) и да се демонстрира  ясно  отношение  конце­  
нтрация -отговор : 
— Високото  равнище  на концентрация  трябва  да води  до токсични  
ефекти , но без да предизвиква  трайни  признаци  или смъртност , 
които  биха  възпрепятствали  съдържателната  оценка . 
— Междинните  равнища  на концентрация  трябва  да са разпределени  
така, че да се получи  градация  на токсичните  ефекти  между  тези 
при ниска  и тези при висока  концентрация . 
— Ниското  равнище  на концентрация  трябва  да предизвиква  малки  
или никакви  признаци  на токсичност . 
Междинни  умъртвявания  
16. Ако се планират  междинни  умъртвявания , броят  на животните  при 
всяка  експозиция  трябва  да бъде  увеличен  с планирания  за умъртвяване  
преди  приключване  на изследването  брой  животни . Следва  да се 
предостави  обосновка  за използването  на междинни  умъртвявания  и 
същите  следва  да бъдат  отчитани  по подходящ  начин  от статист­  
ическите  анализи . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 425
 
Изследване  със сателитна  група  (за обратимост ) 
17. Изследването  със сателитна  група  (за обратимост ) може  да бъде  
използвано  за наблюдение  на случаи  на обратимост , персистиране  
или забавяне  на проявата  на токсичността  за достатъчно  дълъг  
период  след  третирането , но не по-малък  от 14 дни. Сателитните  
групи  (за изследване  на обратимостта ) се състоят  от 10 мъжки  и 10 
женски  животни , експонирани  едновременно  с опитните  животни  в 
основното  изследване . Изследваните  сателитни  групи  (за изследване  
на обратимостта ) следва  да бъдат  експонирани  на изпитвания  
химикал  при най-високото  равнище  на концентрация  от изследвания  
химикал  и следва  да има паралелни  контроли  на въздуха  и/или на 
носителя , ако е необходимо  (вж. точки  18).  
Контролни  животни  
18. Животните  за паралелните  негативни  контроли  (въздух ) следва  да се 
третират  по същия  начин , както  и изпитваната  група  животни , с 
изключение  на това, че те са изложени  на филтруван  въздух , а не на 
изпитвания  химикал . Когато  за подпомагане  генерирането  на 
атмосферата  за изпитване  се използва  вода  или друго  вещество , в 
изследването  трябва  да се включи  контролна  група  за носителя  
вместо  група  за паралелни  негативни  контроли  (въздух ). Когато  това 
е възможно , като носител  трябва  да се използва  вода . Когато  водата  се 
използва  като носител , контролните  животни  трябва  да бъдат  
експонирани  на въздух  със същата  относителна  влажност  като 
експонираните  групи . Изборът  на подходящ  носител  следва  да се 
базира  върху  подходящо  проведено  предварително  проучване  или 
върху  данни  за минали  периоди . Ако носителят  не е с добре  позната  
токсичност , ръководителят  на изследването  може  да реши  да използва  
както  негативни  контроли  (въздух ), така и контроли  за носителя , но 
това силно  се обезкуражава . Ако данните  за минали  периоди  показват , 
че даден  носител  не е токсичен , тогава  няма  необходимост  от 
негативна  контролна  група  (въздух ), а следва  да се използва  само  
контрол  на носителя . Ако при дадено  предварително  проучване  на 
смесен  с носител  изпитван  химикал  не бъде  установена  токсичност , 
от това следва , че носителят  не е токсичен  при концентрацията  на 
изпитване  и следва  да бъде  използвана  тази контрола  за носителя . 
УСЛОВИЯ  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Прилагане  на концентрациите  
19. Животните  се експонират  на изпитвания  химикал , който  представлява  
газ, пари , аерозол  или смес  от тях. Агрегатното  състояние , което  трябва  
да бъде  изпитано , зависи  от физичните  и химичните  свойства  на 
изпитвания  химикал , избраната  концентрация , и/или най-вероятната  
физична  форма  по време  на манипулирането  и употребата  на 
изпитвания  химикал . Хигроскопични  и химически  реактивоспособни  
изпитвани  химикали  следва  да бъдат  изпитвани  в среда  от сух 
въздух . Следва  да се полагат  грижи  за избягване  достигането  на конце­  
нтрации , при които  може  да бъде  причинена  експлозия . Частици  от 
материал  могат  да бъдат  подложени  на механични  процеси  за 
намаляване  на размера  на частиците . Повече  подробна  информация  е 
предоставена  в GD 39 (2).  
Разпределение  според  размера  на частиците  
20. Следва  да бъде  извършено  определяне  на размера  на частиците  за 
всички  аерозоли  и за парите , които  могат  да кондензират  с образуване  
на аерозоли . За да могат  да бъдат  експонирани  всички  относими  части  
на дихателните  пътища  се препоръчват  аерозоли  с диаметър , равен  на 
аеродинамичния  диаметър  при медианата  на масата  на 
частиците  (MMAD), намиращ  се в диапазон  от 1 до 3 μm и с геом­  
етрично  стандартно  отклонение  (σ g ) в диапазон  от 1,5 до 3,0 (4). 
Въпреки  че следва  да се положи  разумно  усилие  за спазване  на този 
стандарт , ако това не може  да бъде  постигнато  следва  да бъде  предо­  
ставена  експертна  оценка . Например  размерите  на частиците  при 
метални  пари  могат  да бъдат  по-малки  от този стандарт , а тези на 
заредени  частици  и влакна  могат  да надхвърлят  този стандарт . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 426
 
Подготовка  на изпитвания  химикал  в носител  
21. В идеалния  случай  изпитваният  химикал  трябва  да бъде  изпитван  без 
носител . Ако е необходимо  да се използва  носител  за генериране  на 
подходяща  концентрация  и размер  на частиците  на изпитвания  
химикал , за предпочитане  следва  да се използва  вода . Когато  
изпитваният  химикал  се разтваря  в носител , следва  неговата  стабилност  
да бъде  доказана . 
МОНИТОРИНГ  НА УСЛОВИЯТА  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Въздушен  поток  в камерата  
22. Въздушният  поток  през камерата  за експозиция  трябва  да бъде  вним­  
ателно  контролиран , непрекъснато  наблюдаван  и записван  най-малко  
на всеки  час по време  на всяка  експозиция . Мониторингът  на конце­  
нтрацията  в реално  време  на атмосферата  за изпитване  (или на стабил­  
ността  във времето ) представлява  цялостно  измерване  на всички  
динамични  параметри  и предоставя  непряко  средство  за контрол  на 
всички  относими  динамични  параметри , свързани  с инхалацията . Ако 
се извършва  мониторинг  на концентрацията  в реално  време , честотата  
на измерването  на въздушния  поток  може  да бъде  намалена  до едно  
единствено  измерване  на експозиция  дневно . Специално  внимание  
следва  да се обърне  на избягване , при камери  за експозиция  само  
през носа , на повторно  инхалиране . Концентрацията  на кислород  
следва  да бъде  не по-малко  от 19 %, а концентрацията  на въглероден  
диоксид  не трябва  да превишава  1 %. Ако има основание  да се смята , 
че тези стандарти  не могат  да бъдат  спазени , концентрациите  на 
кислорода  и на въглеродния  диоксид  следва  да се измерват . Ако 
измерванията  в първия  ден от експозицията  показват , че тези газове  
са на подходящи  равнища , допълнителни  измервания  не следва  да са 
необходими . 
Температура  и относителна  влажност  на камерата  
23. Температурата  в камерата  трябва  да се поддържа  на 22 ± 3 °C. Относ­  
ителната  влажност  в зоната  на дишане  на животните  — както  за 
експозиция  само  през носа , така и за експозиция  на цялото  тяло  — 
трябва  да бъде  наблюдавана  непрекъснато  и записвана  на всеки  час по 
време  на всяка  експозиция , когато  е възможно . Предпочита  се относит­  
елната  влажност  да бъде  поддържана  в диапазона  между  30 и 70 %, но 
това може  или да се окаже  непостижимо  (например  при изпитване  на 
смеси  на основата  на вода ), или да не може  да бъде  измерено  поради  
въздействие  на изпитвания  химикал  върху  метода  за изпитване . 
Изпитван  химикал : Номинална  концентрация  
24. Когато  е осъществимо , номиналната  концентрация  в камерата  за 
експозиция  следва  да се изчислява  и записва . Номиналната  конце­  
нтрация  е масата  на генерирания  изпитван  химикал , разделена  на 
общия  обем  въздух , преминал  през системата  на инхалационната  
камера . Номиналната  концентрация  не се използва  за характеризиране  
на експозицията  на животните , а сравнение  между  номиналната  и 
действителната  концентрация  дава показание  за ефикасността  на 
генериране  на системата  за изпитване  и следователно  може  да се 
използва  за откриване  на проблеми  при генерирането . 
Изпитван  химикал : Действителна  концентрация  
25. Действителната  концентрация  е концентрацията  на изпитвания  химикал  
в зоната  на дишане  на животните  в дадена  инхалационна  камера . 
Действителни  концентрации  могат  да бъдат  получени  чрез специфични  
методи  (например  чрез пряко  пробовземане , свързани  с адсорбция  или 
с химична  реакция  методи  и последващо  аналитично  охарактеризиране ) 
или чрез неспецифични  методи  като гравиметричен  анализ  с 
филтруване . Използването  на гравиметричен  анализ  е приемливо  само  
за еднокомпонентни  прахови  аерозоли  или за аерозоли  от ниско  
летливи  течности  и следва  да бъде  подпомогнато  от подходящо  спец­  
ифично  за изпитвания  химикал  охарактеризиране  чрез предварително  
изследване . Концентрацията  на многокомпонентни  прахови  аерозоли  
също  може  да бъде  определяна  чрез гравиметричен  анализ . Това ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 427
 
обаче  изисква  аналитични  данни , които  доказват , че съставът  на 
намиращия  се във въздуха  материал  е подобен  на този на изходния  
материал . Ако тази информация  не е налична , може  да е необходимо  
извършване  на анализ  на изпитвания  химикал  (в идеалния  случай  в 
състоянието , в което  е разтворен  във въздуха ), повтарящо  се на 
редовни  интервали  по време  на изследването . За агенти  в аерозолна  
форма , които  могат  да се изпаряват  или да сублимират , следва  да се 
покаже , че всички  фази  са събрани  по избрания  метод . 
26. По възможност  за времетраенето  на изследването  следва  да се използва  
една  партида  от изпитвания  химикал , като изпитваната  проба  следва  да 
се съхранява  при условия , при които  се поддържат  нейната  чистота , 
хомогенност  и устойчивост . Преди  началото  на изследването  следва  да 
се направи  охарактеризиране  на изпитвания  химикал , включително  
неговата  чистота  и, ако е технически  осъществимо , идентичността , 
както  и количествата  на идентифицираните  замърсители  и примеси . 
Това  може  да бъде  доказано  от, но не се ограничава  до, следните  
данни : време  на задържане  и относителна  площ  на пика , получена  
чрез масспектрометрия  или газова  хроматография  молекулна  маса , 
или други  оценки . Въпреки  че лабораторията , извършваща  изпитвания , 
не носи  отговорност  за идентифицирането  на пробата  за изпитване , 
може  да е разумно  лабораторията , извършваща  изпитвания , да 
потвърди  охарактеризирането  на финансиращия , дори  и в ограничена  
степен  (например  цвят , физична  природа  и др.). 
27. Атмосферата  на експозицията  трябва  да бъде  поддържана  постоянна , 
доколкото  е практически  възможно . Могат  да се използват  устройства  
за мониторинг  в реално  време , като аерозолен  фотометър  (за аерозоли ) 
или анализатор  на общо  съдържание  на въглеводороди  (за пари ), за да 
се докаже  стабилността  на условията  на експозиция . Действителната  
концентрация  в камерата  трябва  да се измерва  най-малко  3 пъти  през 
всеки  ден, в който  се извършва  експозиция , за всяко  равнище  на 
експозицията . Ако това не е осъществимо  поради  ограничена  скорост  
на въздушния  поток  или поради  ниска  концентрация , допустимо  е по 
едно  пробовземане  през всеки  период  на експозиция . В идеалния  
случай  тази проба  следва  след  това да бъде  вземана  през целия  
период  на експозиция . Индивидуалните  проби  от концентрацията  в 
камерата  не трябва  да се отклоняват  от средната  концентрация  в 
камерата  с повече  от ± 10 % за газовете  и парите  или ± 20 % за 
течните  или твърдите  аерозоли . Времето  за уравновесяване  на 
камерата  (t 95 ) следва  да се изчислява  и докладва . Продължителността  
на експозицията  обхваща  времето  за генериране  на изпитвания  
химикал . Тук се взема  под внимание  времето  за уравновесяване  на 
камерата  (t 95 ) и за разпад . Указания  за оценката  на t 95 могат  да бъдат  
намерени  в GD 39 (2).  
28. При много  сложни  смеси , съставени  от газове /пари  и аерозоли  
(например  атмосфера  след  горене  и изпитвани  химикали , отделяни  от 
целеви  продукти /оборудване  за крайна  употреба ), всяка  фаза  може  да 
реагира  по различен  начин  в инхалационната  камера . Следователно  от 
всяка  фаза  (газ/пари  и аерозол ) следва  да бъде  избрано  най-малко  едно  
вещество  (аналит ), служещо  като показател , като обичайно  това е 
основното  активно  вещество  в сместа . Когато  изпитваният  химикал  е 
смес , аналитичната  концентрация  следва  да се докладва  за цялата  смес , 
а не само  за активната  съставка  или за веществото , служещо  като 
показател  (аналита ). Допълнителна  информация  относно  действит­  
елните  концентрации  може  да бъде  намерена  в GD 39 (2).  
Изпитван  химикал : Разпределение  според  размера  на частиците  
29. Разпределението  според  размера  на частиците  на аерозоли  трябва  да се 
определя  най-малко  веднъж  седмично  за всяка  концентрация , като се 
използва  каскаден  импактор  или алтернативен  инструмент , като 
например  спектрометър  за определяне  на размера  на аеродинамични  
частици . Ако може  да бъде  доказана  равностойността  на резултатите , 
получени  от каскадния  импактор  и от алтернативния  инструмент , 
тогава  алтернативният  инструмент  може  да бъде  използван  по време  
на цялото  изследване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 428
 
30. Успоредно  с основния  инструмент  следва  да бъде  използвано  второ  
устройство , като например  гравиметричен  филтър  или поглътител  с 
въвеждаща  тръбичка  (импинджер )/барботиращ  апарат , за да се 
потвърди  ефикасността  на пробовземането  на основния  инструмент . 
Масовата  концентрация , получена  чрез анализ  на размера  на частиците , 
следва  да бъде  в рамките  на разумни  граници  от масовата  конце­  
нтрация , получена  чрез филтруване  [вж. GD 39 (2)]. В случай  че 
тяхната  равностойност  може  да бъде  доказана  при всички  изпитвани  
концентрации  в ранния  етап на изследването , могат  да не се извършват  
допълнителни  измервания  за потвърждение . От съображения  за 
хуманно  отношение  към животните  следва  да се вземат  мерки  за 
свеждане  до минимум  на недостатъчните  за формулиране  на 
заключение  данни , които  могат  да доведат  до необходимост  от 
повтаряне  на дадено  изследване . 
31. Определяне  на размера  на частиците  трябва  да бъде  направено  за пари , 
ако съществува  вероятност  кондензация  на парите  да доведе  до 
образуване  на аерозол , или ако бъдат  открити  частици  в атмосфера  
от пари  с потенциал  за смесени  фази . 
НАБЛЮДЕНИЯ  
32. Върху  животните  трябва  да бъдат  извършвани  клинични  наблюдения  
преди , по време  на периода  на експозиция  и след  него . Може  да има 
показания  за по-чести  наблюдения  в зависимост  от отговора  на 
животните  по време  на експозицията . Когато  наблюдението  на 
животните  е възпрепятствано  от използването  на ограничителни  
тръби  за животните , недостатъчно  осветени  камери  за експозиция  на 
цялото  тяло , или непрозрачна  атмосфера , животните  следва  да се набл­  
юдават  внимателно  след  експозицията . При наблюденията  преди  
експозицията  на следващия  ден, може  да се извърши  оценка  на 
всякаква  обратимост  или задълбочаване  на токсичните  ефекти . 
33. Всички  наблюдения  се записват  в поддържани  за всяко  животно  
индивидуални  записи . Когато  животните  са умъртвени  по хуманни  
причини  или са намерени  мъртви , времето  на смъртта  им следва  да 
бъде  записано  колкото  е възможно  по-точно . 
34. Наблюденията  в клетките  следва  да включват  изменения  в кожата  и 
козината , очите  и лигавиците ; изменения  в дихателната  и кръвоносната  
системи , изменения  в нервната  система , както  и в соматомоторната  
активност  и моделите  на поведение . Вниманието  следва  да бъде  
насочено  към наблюдения  на треперене , конвулсии , слюноотделяне , 
диария , летаргия , сън и кома . Измерването  на ректалната  температура  
може  да предостави  подкрепящи  доказателства  за рефлекторно  
забавено  дишане  или хипотермия /хипертермия , свързани  с третирането  
или затвореното  пространство . В протокола  от изследването  могат  да 
бъдат  включени  допълнителни  оценки , като кинетика , биомониторинг , 
функция  на белите  дробове , задържане  на малко  разтворими  
материали , които  се натрупват  в белодробната  тъкан , и промени  в 
поведението . 
ТЕЛЕСНО  ТЕГЛО  
35. Индивидуалното  телесно  тегло  на животните  следва  да се записва  
непосредствено  преди  първата  експозиция  (ден 0), по два пъти  на 
седмица  след  това (например : в понеделник  и в петък , за доказване  
на възстановяване  през уикенд , в който  не е извършвана  експозиция , 
или в даден  времеви  интервал , за да се даде  възможност  за оценяване  
на системната  токсичност ), и към момента  на настъпване  на смъртта  
или умъртвяването . Ако няма  ефекти  през първите  4 седмици , 
телесното  тегло  може  да се измерва  веднъж  седмично  за останалото  
време  от изследването . Измерването  на теглото  на животните  от 
сателитните  групи  (за обратимост ) (в случай  на използване  на такива ) 
следва  да продължава  един  път седмично  през целия  период  на възста­  
новяване . При прекратяването  на изследването  всички  животни  следва  
да бъдат  претеглени  непосредствено  преди  умъртвяването , за да се даде  
възможност  за изчисляване  без изместване  на съотношенията  между  
теглото  на органите  и на цялото  тяло . 
КОНСУМАЦИЯ  НА ХРАНА  И ВОДА  
36. Консумацията  на храна  трябва  да се измерва  всяка  седмица . Консум­  
ацията  на вода  също  може  да се измерва . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 429
 
КЛИНИЧНА  ПАТОЛОГИЯ  
37. Оценките  за клиничната  патология  следва  да бъдат  правени  за всички  
животни , включително  тези в контролни  и сателитни  групи  (за обрат­  
имост ), когато  те се умъртвяват . Интервалът  от време  между  края  на 
експозицията  и вземането  на кръв  трябва  да се записва , особено  когато  
възстановяването  на изследваната  крайна  точка  е бързо . Има показания  
за вземане  на проби  след  края  на експозицията  за параметрите  с кратък  
плазмен  полуживот  (напр . COHb, CHE и MetHb).  
38. В таблица  1 са изброени  параметрите  на клиничната  патология , които  
обичайно  се изискват  за всички  токсикологични  изследвания . Изследване  
на урина  рутинно  не е необходимо , но може  да се извършва , ако се 
счита  че е необходимо  поради  очаквана  или наблюдавана  токсичност . 
Ръководителят  на изследването  може  да избере  да оцени  допълнителни  
параметри , за да охарактеризира  по-добре  токсичността  на даден  
изпитван  химикал  (напр . холинестераза , липиди , хормони , киселинно - 
алкално  равновесие , метхемоглобин  или телца  на Heinz, креатинкиназа , 
миелоидно -еритроидно  съотношение , тропонин , газове  в артериалната  
кръв , лактатдехидрогеназа , сорбиталдехидрогеназа , глутам­  
атдехидрогеназа , и гама -глутамилтранспептидаза ). 
Таблица  1 
Стандартни  параметри  на клиничната  патология  
Хематология  
Брой  на еритроцитите  
Хематокрит  
Концентрация  на хемоглобина  
Средно  съдържание  на хемоглобин  
Среден  обем  на еритроцитите  
Средна  концентрация  на 
хемоглобин  в еритроцитите  
Ретикулоцити  Общ  брой  на левкоцитите  
Диференциален  брой  на 
левкоцити  
Брой  на тробмоцитите  
Потенциал  за съсирване  
(изберете  едно  от посочените ): 
— протромбиново  време  
— време  за съсирване  
— частично  тромбопластиново  
време  
Клинична  химия  
Глюкоза  (*) 
Общ  холестерол  
Триглицериди  
Азот  в кръвна  уреа  
Общ  билирубин  
Креатинин  
Общо  белтъци  
Албумин  
Глобулин  Аланинаминотрансфераза  
Аспартатаминотрансфераза  
Алкална  фосфатаза  
Калий  
Натрий  
Калций  
Фосфор  
Хлорид  
Изследвания  на урина  (незадължителни ) 
Външен  вид (цвят  и мътност ) 
Обем  
Относителна  плътност  или осмол­  
алност  
pH Общо  белтъци  
Глюкоза  
Кръв /кръвни  клетки  
(*) Тъй като продължителен  период  на гладуване  може  да доведе  до изместване  
при измерването  на глюкозата  за третираните  животни  в сравнение  с 
контролните , ръководителят  на изследването  следва  да определи  дали  е 
целесъобразно  гладуването  на животните . Ако се прилага  период  на 
гладуване , същият  следва  да бъде  съобразен  с използвания  животински  
вид; за плъхове  той може  да бъде  16 h (гладуване  през нощта ). Определянето  
на глюкоза  на гладно  може  да се извърши  след  гладуването  през нощта  през 
последната  седмица  на експозиция  или след  гладуването  през  нощта  преди  
аутопсията  (в последния  случай  — заедно  с всички  други  параметри  на 
клиничната  патология ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 430
 
39. Когато  има доказателства , че долните  дихателни  пътища  (т.е. 
алвеолите ) са основното  място  на отлагане  и задържане , тогава  брон­  
хоалвеоларният  лаваж  (BAL) може  да бъде  избраната  техника  за колич­  
ествен  анализ  на хипотетичните  параметри  доза-ефект , с насочване  към 
алвеолит , възпаление  на белите  дробове  и фосфолипидоза . Това  
позволява  измененията  на зависимостта  доза-отговор  и измененията  
във времето  на уврежданията  на алвеолите  да бъдат  проучени  по 
подходящ  начин . Течността  от BAL може  да бъде  анализирана  за 
общ и диференциален  брой  левкоцити , общо  белтъци  и лакт­  
атдехидрогеназа . Други  параметри , които  могат  да бъдат  съобразени , 
са тези, които  са показателни  за лизозомни  увреждания , фосфол­  
ипидоза , фиброза  и възпаление , причинено  от дразнене  или от 
алергия , което  може  да включва  определяне  на провъзпалителни  
цитокини /хемокини . Измерванията  на BAL по принцип  допълват  
резултатите  от хистопатологичните  изследвания , но не могат  да ги 
заместят . Насоки  за това как да се извършва  лаваж  на белия  дроб  
могат  да бъдат  намерени  в GD 39 (2).  
ОФТАЛМОЛОГИЧНИ  ИЗСЛЕДВАНИЯ  
40. Следва  на всички  животни  да бъдат  извършени  офталмологични  
изследвания  на очното  дъно , пречупващите  среди , ириса  и коню­  
нктивата , с използване  на офталмоскоп  или равностойно  устройство , 
преди  прилагането  на изпитвания  химикал , и — при прекратяването  — 
на всички  групи , експонирани  на висока  концентрация  и на 
контролните  групи . Ако се открият  изменения  в очите , всички  
животни  в другите  групи  трябва  да бъдат  изследвани , включително  
сателитната  група  (за обратимост ). 
МАКРОСКОПСКА  ПАТОЛОГИЯ  И ТЕГЛО  НА ОРГАНИ  
41. Всички  изпитвани  животни , включително  умрелите  по време  на 
изпитването  или отстранени  от изследването  по причини , свързани  с 
хуманното  отношение  към животните , следва  да бъдат  подложени  на 
пълно  обезкръвяване  (ако е осъществимо ) и на макроскопска  аутопсия . 
Времето  между  края  на последната  експозиция  на всяко  животно  и 
умъртвяването  му следва  да се записва . Ако аутопсията  не може  да 
се извърши  веднага  след  откриването  на мъртвото  животно , трупът  на 
животното  трябва  да бъде  охладен  (но не замразен ) при температури , 
достатъчно  ниски  за да бъде  сведена  до минимум  автолизата . 
Аутопсията  следва  да се извърши  във възможно  най-кратък  срок , 
обичайно  в рамките  на един  или два дни. Следва  да бъдат  записани  
всички  макроскопски  патологични  изменения  за всяко  животно , като се 
обърне  особено  внимание  на всякакви  изменения  в дихателните  
пътища . 
42. В таблица  2 се изброяват  органите  и тъканите , които  трябва  да бъдат  
консервивани  в подходяща  среда  по време  на макроскопската  аутопсия  
за хистопатологично  изследване . Консервирането  на поставените  в 
средни  скоби  в таблицата  органи  и тъкани  и на всякякви  други  
органи  и тъкани  е по преценка  на ръководителя  на изследването . 
Органите  с удебелен  шрифт  следва  да бъдат  почистени  и претеглени  
като мокро  тегло  колкото  е възможно  по-бързо  след  дисекцията , за да 
се избегне  изсъхването  им. Щитовидната  жлеза  и епидидимите  следва  
да бъдат  претегляни  само  при необходимост , тъй като артефакти  от 
почистването  могат  да възпрепятстват  хистопатологичната  оценка . 
Тъканите  и органите  следва  да бъдат  фиксирани  в 10 % буфериран  
формалинов  разтвор  или друг  подходящ  фиксатор  веднага  след  
извършването  на аутопсията  и не по-малко  от 24 до 48 часа преди  
почистването  в зависимост  от използвания  фиксатор . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 431
 
Таблица  2 
Органи  и тъкани , консервирани  по време  на макроскопската  аутопсия  
Надбъбречни  жлези  
Аорта  
Костен  мозък  (и/или прясно  фиксиран  
аспират ) 
Мозък  (включително  части  от главния  
мозък , малкия  мозък  и моста ) 
Цекум  
Колон  
Дванадесетопръстник  
[Епидидими ] 
[Очи (ретина , оптичен  нерв ) и клепачи ] 
Бедрена  кост и колянна  става  
Жлъчен  мехур  (при наличие  на такъв ) 
Хардерови  жлези  
Сърце  
Илеум  
Празно  черво  
Бъбреци  
[Слъзни  жлези  (клепачни )] 
Ларинкс  (3 равнища , включително  
основата  на епиглотиса ) 
Черен  дроб  
Бял дроб  (всички  лобове  на едно  
равнище , включително  главни  бронхи ) 
Лимфни  възли  от областта  на хилуса  на 
белия  дроб , особено  при малко  разт­  
ворими  изпитвани  химикали  под 
формата  на частици . За по-задълбочени  
изследвания  и/или изследвания  с имунна  
насоченост  могат  да се вземат  предвид  
допълнителни  лимфни  възли , например  
от медиастиналната , цервикалната /су­ 
бмандибуларната  и/или аурикуларната  
области . 
Лимфни  възли  (дистално  от входното  
място  на увреждането ) 
Млечна  жлеза  (женска ) 
Мускул  (бедрен ) 
Нософарингсни  тъкани  (най-малко  4 
равнища ; 1 равнище  следва  да включва  
нософарингсния  канал  и назално  
асоциираната  лимфоидна  тъкан  (NALT)  Хранопровод  
[Обонятелна  луковица ] 
Яйчници  
Панкреас  
Околощитовидни  жлези  
Периферен  нерв  (седалищен  или голямоп­  
ищялен , за предпочитане  в непосредствена  
близост  до мускул ) 
Хипофиза  
Простатна  жлеза  
Право  черво  
Слюнчени  жлези  
Семенни  мехурчета  
Кожа  
Гръбначен  мозък  (шийно , гръдно  и поясно  
ниво ) 
Далак  
Гръдна  кост 
Стомах  
Зъби  
Тестиси  
Тимус  
Щитовидни  жлези  
[Език ] 
Трахея  (най-малко  2 равнища , включващи  1 
надлъжен  срез през хребетовидната  
структура  и 1 напречен  срез) 
[Уретер ] 
[Уретра ] 
Пикочен  мехур  
Матка  
Прицелни  органи  
Всички  макроскопски  увреждания  и 
разраствания  на тъканна  маса ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 432
 
43. Белите  дробове  следва  да се отстранят  невредими , да се претеглят  и 
третират  с подходящ  фиксатор  при налягане  от 20—30 cm воден  стълб , 
за да се гарантира  запазване  на структурата  им (5). Срезове  следва  да 
се събират  за всички  лобове  на едно  равнище , включително  главните  
бронхи , но ако е извършен  лаваж  на белия  дроб , следва  да бъдат  
направени  срезове  на три равнища  на лоба , на който  не е извършен  
лаваж  (не серийни  срезове ). 
44. Най-малко  4 равнища  на нософарингсните  тъкани  трябва  да бъдат  
изследвани , едното  от които  следва  да включва  нософарингсния  
канал  (5) (6) (7) (8) (9), за да се даде  възможност  за адекватно  
изследване  на плоския , преходния  (респираторен  без реснички ), 
респираторния  (респираторен  с реснички ) и обонятелния  епители , и 
дрениращата  лимфна  тъкан  (NALT) (10) (11). Три равнища  на 
ларинкса  трябва  да бъдат  изследвани , като едно  от тези равнища  
следва  да включва  основата  на епиглотиса  (12). Най-малко  две 
равнища  на трахеята  следва  да бъдат  изследвани , включително  един  
надлъжен  срез през хребетовидната  структура  на разклонението  на 
извънбелодробните  бронхи  и един  напречен  срез. 
ХИСТОПАТОЛОГИЯ  
45. Следва  да бъде  направена  хистопатологична  оценка  на всички  органи  и 
тъкани , изброени  в таблица  2, за контролната  и експонираната  на 
висока  концентрация  групи , и за всички  животни , които  са умрели  
или са умъртвени  по време  на изследването . Особено  внимание  
следва  да се обърне  на дихателните  пътища , прицелните  органи  и 
макроскопските  увреждания . Органите  и тъканите , които  имат  
увреждания  от групата , експонирана  на висока  концентрация , следва  
да бъдат  изследвани  във всички  групи . Ръководителят  на изследването  
може  да избере  да се извършат  хистопатологични  оценки  за допълн­  
ителни  групи , за да се докаже  ясна  зависимост  концентрация -отговор . 
Когато  се използва  сателитна  група  (за обратимост ), хистопатолог­  
ичната  оценка  следва  да се извършва  на всички  тъкани  и органи  с 
показан  ефект  при третираните  групи . Ако са налице  прекомерен  
брой  случаи  на ранна  смърт  или други  проблеми  в групата , 
експонирана  на висока  концентрация , които  застрашават  значимостта  
на данните , следващата  по-ниска  концентрация  следва  да бъде  хист­  
опатологично  изследвана . Трябва  да се направи  опит  за съпоставяне  
на макроскопските  наблюдения  и микроскопските  находки . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
46. Следва  да се предоставят  индивидуалните  данни  за животните  относно  
тяхното  телесно  тегло , консумация  на храна , клинична  патология , 
макроскопска  патология , теглото  на органите  и хистопатология . 
Данните  от клиничните  наблюдения  следва  да бъдат  обобщени  в 
таблична  форма , показваща  за всяка  от изпитваните  групи  броя  на 
използваните  животни , броя  на животните , проявяващи  специфични  
признаци  за токсичност , броя  на животните , намерени  мъртви  по 
време  на изпитването  или умъртвени  по хуманни  причини , времето  
на настъпване  на смъртта  на отделните  животни , описание  и развитие  
във времето  на токсичните  ефекти  и обратимостта  им, както  и 
находките  при аутопсията . Всички  резултати , количествени  и 
инцидентни , трябва  да бъдат  оценени  с помощта  на подходящ  статист­  
ически  метод . Може  да се използва  всеки  общоприет  статистически  
метод  и статистическите  методи  следва  да бъдат  избрани  при 
планирането  на изследването . 
Доклад  от изпитването  
47. Докладът  от изпитването  по целесъобразност  следва  да включва  
следната  информация : 
Изпитвани  животни  и отглеждане  
— Описание  на условията  в клетките , включително : брой  (или 
промяна  в броя ) на животните  в една  клетка , материал  за постилане , 
температура  и относителна  влажност  на околната  среда , продължит­  
елност  на излагане  на светлина  и идентифициране  на хранителния  
режим . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 433
 
— Използван  вид/порода  и обосновка  за използване  за видове , 
различни  от плъх . Източник  и данни  за минали  периоди  могат  да 
бъдат  предоставени , ако са за животни , експонирани  при сходни  
условия  на експозиция , отглеждане  и режим  на гладуване . 
— Брой , възраст  и пол на животните . 
— Метод  на случаен  подбор . 
— Описание  на всякакво  кондициониране  преди  изпитването , включ­  
ително  хранителен  режим , карантина  и лечение  на заболявания . 
Изпитван  химикал  
— Физична  форма , чистота  и, където  е относимо , физични  и химични  
свойства  (включително  изомеризация ). 
— Идентификационни  данни  и номер  съгласно  химичния  регистър  на 
Службата  за химични  индекси  (CAS), ако са известни . 
Носител  
— Обосновка  за използването  на носител  и обосновка  за избора  на 
носителя  (ако е различен  от вода ). 
— Данни  за минали  периоди  или паралелни  данни , доказващи  че 
носителят  не пречи  на резултата  от изследването . 
Инхалационна  камера  
— Подробно  описание  на инхалационната  камера , включително  обем  и 
схема . 
— Източник  и описание  на оборудването , използвано  за експозицията  
на животните , както  и за генерирането  на атмосферата . 
— Оборудване  за измерване  на температурата , относителната  
влажност , размера  на частиците  и действителната  концентрация . 
— Източник  на въздух  и система , използвана  за кондициониране . 
— Използвани  методи  за калибриране  на оборудването  за гарантиране  
на хомогенна  атмосфера  за изпитване . 
— Разлика  в налягането  (положителна  или отрицателна ). 
— Отвори  за експозиция  за всяка  камера  (експозиция  само  през носа ); 
местоположение  на животните  в камерата  (експозиция  на цялото  
тяло ). 
— Устойчивост  на атмосферата  за изпитване . 
— Разположение  на датчиците  за температура  и относителна  влажност  
и пробовземане  на атмосферата  за изпитване  в камерата . 
— Обработка  на доставяния /извличания  въздух . 
— Скорости  на въздушния  поток , скорост  на въздушния  поток  при 
отвор  за експозиция  (експозиция  само  през носа ) или брой  
животни  на камера  (експозиция  на цялото  тяло ). 
— Време  за уравновесяване  на инхалационната  камера  (t 95 ). 
— Брой  изменения  на обема  на час. 
— Измервателни  прибори  (ако е приложимо ). 
Данни  за експозицията  
— Обосновка  за избора  на целева  концентрация  в основното  
изследване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 434
 
— Номинални  концентрации  (обща  маса  на изпитвания  химикал , 
генерирана  в инхалационната  камера , разделена  на преминалия  
през камерата  обем  въздух ). 
— Действителни  концентрации  на изпитвания  химикал , взети  от 
зоната  на дишане  на животните ; за смеси , които  произвеждат  
хетерогенни  физични  форми  (газове , пари , аерозоли ), всяка  от 
тези форми  може  да бъде  анализирана  отделно . 
— Всички  концентрации  във въздуха  следва  да бъдат  докладвани  в 
единици  за масова  концентрация  (mg/l, mg/m  3 и т.н.), а не в 
единици  за отношение  на обем  (ppm, ppb и т.н.). 
— Разпределение  на частиците  по размер , аеродинамичен  диаметър  
при медианата  на масата  на частиците  (MMAD) и геометрично  
стандартно  отклонение  (σ g ), включително  методите  за изчис­  
ляването  им. Отделните  анализи  на размерите  на частиците  следва  
да бъдат  докладвани . 
Условия  на изпитването  
— Подробна  информация  за приготвянето  на изпитвания  химикал , 
включително  подробна  информация  за всякакви  процедури , 
използвани  за намаляване  на размера  на частиците  на твърди  
материали  или за приготвяне  на разтвори  на изпитвания  химикал . 
— Описание  (за предпочитане  включващо  схема ) на оборудването , 
използвано  за генериране  на атмосферата  за изпитване  и за 
експозиция  на животните  на атмосферата  за изпитване . 
— Подробна  информация  за оборудването , използвано  за наблюдение  
на температурата , относителната  влажност  и въздушния  поток  в 
камерата  (т.е. разработване  на калибрационна  крива ). 
— Подробна  информация  за оборудването , използвано  за 
пробовземане  за определяне  на концентрацията  и разпределението  
на частиците  по размери  в камерата . 
— Подробна  информация  за използвания  метод  за анализ  на химикала  
и за валидирането  на метода  (включително  и ефикасността  на 
добива  на изпитвания  химикал  от матрицата  на пробата ). 
— Метод  на случаен  подбор  при разпределяне  на животните  в 
изпитвани  и контролни  групи . 
— Подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  тип на хранителния  режим /източник , водоизточник ). 
— Обосновката  за избора  на концентрациите  за изпитване . 
Резултати  
— Таблично  представяне  на данните  за температурата , относителната  
влажност  и въздушния  поток  в камерата . 
— Таблично  представяне  на данните  за номиналната  и действителната  
концентрация  в камерата . 
— Таблично  представяне  на данните  за размера  на частиците , включ­  
ително  аналитични  данни  за пробовземането , за разпределението  на 
частиците  по размери , и изчисления  на MMAD и σ g . 
— Таблично  представяне  на данните  за отговора  и равнището  на 
концентрацията  за всяко  животно  (т.е. животни , показващи  
признаци  на токсичност , включително  смъртност , природа , сила , 
време  на настъпване  и продължителност  на ефектите ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 435
 
— Таблично  представяне  на данните  за индивидуалното  телесно  тегло . 
— Таблично  представяне  на данните  за консумацията  на храна . 
— Таблично  представяне  на данните  от клиничната  патология . 
— Находки  при аутопсията  и хистопатологични  находки  за всяко  
животно , ако има такива . 
Дискусия  и интерпретиране  на резултатите  
— Особено  внимание  следва  да се обърне  на описанието  на методите , 
използвани  за спазване  на критериите  на настоящия  метод  за 
изпитване , например  пределната  концентрация , или размера  на 
частиците . 
— В контекста  на цялостните  констатации  следва  да бъде  разгледан  
въпросът  дали  частиците  могат  да бъдат  вдишвани , особено  ако не 
е било  възможно  спазването  на критериите  за размер  на частиците . 
— Съгласуваността  на методите , използвани  за определяне  на номин­  
алните  и действителните  концентрации , както  и отношението  на 
действителната  концентрация  към номиналната  концентрация , 
трябва  да бъдат  включени  в общата  оценка  на изследването . 
— Следва  да бъдат  разгледани  вероятната  причина  за смъртта  и прео­  
бладаващият  начин  на действие  (системно  срещу  локално ). 
— Трябва  да се даде  обосновка , ако е имало  необходимост  от 
умъртвяване  по хуманен  начин  на животни , изпитващи  болка  или 
показващи  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , въз основа  
на критериите  в Ръководството  на ОИСР  за хуманен  край  (3). 
— Трябва  да бъде  идентифициран  прицелният  орган (и). 
— Трябва  да бъдат  определени  нивото  без наблюдаван  неблагоприятен  
ефект  (NOAEL) и най-ниската  доза, при която  се наблюдава  небл­  
агоприятен  ефект  (LOAEL).  
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (1981).  Subchronic Inhalation Toxicity Testing , Original Test 
Guideline № 413, Environment Directorate, OECD, Paris.  
(2) OECD (2009).  Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing,  
Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 39, ENV/JM/MONO(2009)28, OECD, Paris.
 
(3) OECD (2000). Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation, Environmental Health and Safety Monograph Series 
on Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, Paris.
 
(4) Whalan.E and Redden JC (1994). Interim Policy for Particle Size and Limit 
Concentration Issues in Inhalation Toxicity Studies. Office of Pesticide 
Programs, United States Environmental Protection Agency.  
(5) Dungworth DL, Tyler WS, Plopper CE (1985). Morphological Methods for 
Gross and Microscopic Pathology (Chapter 9) in  Toxicology of Inhaled 
Material,  Witschi, H.P. and Brain, J.D. (eds), Springer Verlag Heidelberg, 
pp. 229-258.  
(6) Young JT (1981). Histopathological examination of the rat nasal cavity. 
Fundam. Appl. Toxicol. 1: 309-312.  
(7) Harkema JR (1990). Comparative pathology of the nasal mucosa in labo ­
ratory animals exposed to inhaled irritants. Environ. Health Perspect. 85: 
231-238.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 436
 
(8) Woutersen RA, Garderen-Hoetmer A, van Slootweg PJ, Feron VJ (1994). 
Upper respiratory tract carcinogenesis in experimental animals and in 
humans. In: Waalkes MP and Ward JM (eds) Carcinogenesis. Target Organ Toxicology Series, Raven Press, New York, 215-263.
 
(9) Mery S, Gross EA, Joyner DR, Godo M, Morgan KT (1994). Nasal 
diagrams: A tool for recording the distribution of nasal lesions in rats and mice. Toxicol. Pathol. 22: 353-372.
 
(10) Kuper CF, Koornstra PJ, Hameleers DMH, Biewenga J, Spit BJ, Duijvestijn 
AM, Breda Vriesman van PJC, Sminia T (1992). The role of nasopha ­
ryngeal lymphoid tissue. Immunol. Today 13: 219-224.  
(11) Kuper CF, Arts JHE, Feron VJ (2003). Toxicity to nasal-associated 
lymphoid tissue. Toxicol. Lett. 140-141: 281-285.  
(12) Lewis DJ (1981). Mitotic Indices of Rat Laryngeal Epithelia. Journal of 
Anatomy 132(3): 419-428.  
(13) Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
16 декември  2008 година  относно  класифицирането , етикетирането  и 
опаковането  на вещества  и смеси , за изменение  и за отмяна  на 
директиви  67/548/ЕИО  и 1999/45/ ЕО и за изменение  на Регламент  
(ЕО) № 1907/2006 ( ОВ L 353, 31.12.2008 г., стр. 1). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 437
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  на 
настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 438
 
Б.30. ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА ХРОНИЧНА  ТОКСИЧНОСТ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
452 на ОИСР  (ОИСР  TG 452) (2009 г.). Първоначалното  Указание  за 
изпитване  452 е прието  през 1981 г. Разработването  на този преработен  
метод  Б.30 беше  счетено  за необходимо , за да бъдат  отразени  
последните  достижения  в областта  на хуманното  отношение  към 
животните  и нормативните  изисквания  (1) (2) (3) (4). Актуализирането  
на настоящия  метод  за изпитване  Б.30 е проведено  успоредно  с 
преразглеждането  на глава  Б.32 („Изследвания  за канцерогенност “) и 
глава  Б.33 („Комбинирани  изследвания  за хронична  токсичност /ка­ 
нцерогенност “) от настоящото  приложение , с цел получаване  на 
допълнителна  информация  от животните , използвани  в изследването , 
и предоставяне  на допълнителна  подробна  информация  относно  
избора  на доза. Настоящият  метод  за изпитване  е разработен  за 
използване  при изпитвания  на широк  кръг  от химикали , включително  
пестициди  и промишлени  химикали . 
2. По-голямата  част от изследванията  за хронична  токсичност  се 
извършват  върху  различни  видове  гризачи  и следователно  настоящият  
метод  за изпитване  е предназначен  да се прилага  основно  за 
изследвания , провеждани  върху  тези видове . Ако за такива  изследвания  
се изисква  използване  на видове , различни  от гризачи , принципите  и 
процедурите , описани  в настоящия  метод  за изпитване , заедно  с тези, 
разгледани  в глава  Б.27 от настоящото  приложение  („Изследване  на 
субхронична  орална  токсичност  — 90-дневно  изследване  на токсич­  
ността  при не гризачи  с повтаряща  се доза“) (5), могат  също  така да 
се прилагат , с подходящи  изменения , така както  са очертани  в Ръко­  
водство  на ОИСР  № 116 за планиране  и провеждане  на изследвания  за 
хронична  токсичност  и за канцерогенност  (6). 
3. Трите  основни  пътя  на прилагане , използвани  при изследванията  за 
хронична  токсичност , са орален , дермален  и инхалационен . Изборът  
на път на прилагане  зависи  от физичните  и химичните  характеристики  
на изпитвания  химикал  и от преобладаващия  път на експозиция  при 
хора . Допълнителна  информация  за избора  на път на експозиция  е 
представена  в Ръководство  № 116 на ОИСР  (6). 
4. Настоящият  метод  за изпитване  е съсредоточен  върху  експозицията  по 
орален  път — най-често  използваният  път в изследванията  за хронична  
токсичност . Макар  че дългосрочните  изследвания  за хронична  токс­  
ичност , включващи  експозиция  по дермален  или инхалационен  път, 
могат  също  да бъдат  необходими  за оценка  на риска  за човешкото  
здраве  и/или могат  да бъдат  изисквани  по силата  на някои  нормативни  
уредби , посочените  два пътя  на експозиция  са със значителна  техн­  
ическа  сложност . Такива  изследвания  трябва  да се планират  за всеки  
конкретен  случай , въпреки  че методът  за изпитване  за оценка  на 
хронична  токсичност  чрез прилагане  по орален  път би могъл  да 
послужи  за основа  на протокол  за изследвания , включващи  инхал­  
ационен  и/или дермален  път, по отношение  на препоръките  за 
периодите  за третиране , клиничните  параметри  и параметрите  на 
патологията , и други . Налични  са указания  на ОИСР  за прилагане  на 
изпитвани  химикали  по инхалационен  (6) (7) и дермален  път (6). Глава  
Б.8 от настоящото  приложение  (8) и глава  Б.29 от настоящото  прил­  
ожение  (9), заедно  с Ръководство  на ОИСР  за изпитване  за остра  
инхалаторна  токсичност  (7), следва  специално  да бъдат  консултирани  
при планирането  на по-дългосрочни  изследвания , включващи  
експозиция  по инхалационен  път. Глава  Б.9 от настоящото  приложение  
(10) следва  да бъде  консултирана  в случай  на изпитване , провеждано  
по дермален  път. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 439
 
5. Изследването  за хронична  токсичност  предоставя  информация  за 
възможните  рискове  за здравето , произтичащи  по всяка  вероятност  от 
повтаряща  се експозиция  през значителна  част от продължителността  
на живота  на вида , който  се използва  при изследването . Изследването  
предоставя  информация  за токсичните  ефекти  на изпитвания  химикал ; 
посочва  прицелните  органи  и възможността  за акумулиране . То може  
също  така да предостави  оценка  на нивото  без наблюдаван  неблаг­  
оприятен  ефект , което  може  да бъде  използвано  за установяване  на 
критерии  за безопасност  при експозиция  на хора . Набляга  се и върху  
нуждата  от обстойни  клинични  наблюдения  върху  животните  с цел да 
се получи  колкото  е възможно  повече  информация . 
6. Целите  на изследванията , обхванати  от настоящия  метод  за изпитване , 
включват : 
— идентификацията  на хроничната  токсичност  на изпитван  химикал , 
— идентификацията  на прицелните  органи , 
— характеризиране  на зависимостта  доза-отговор , 
— идентификация  на нивото  без наблюдаван  неблагоприятен  
ефект  (NOAEL) или на отправната  точка  за установяване  на 
еталонна  доза (BMD),  
— прогнозиране  на ефекти  на хронична  токсичност  при нива  на 
експозиция  на човека , 
— предоставяне  на данни  на изпитване  на хипотези  относно  начина  на 
действие  (6). 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
7. При оценката  на токсикологичните  характеристики  на даден  изпитван  
химикал  цялата  достъпна  информация  за изпитвания  химикал  следва  да 
бъде  разгледана  от лабораторията , извършваща  изпитвания , преди  
провеждането  на изследването , с цел да се съсредоточи  планът  на 
изследването  върху  по-ефикасно  изпитване  на потенциала  за 
хронична  токсичност  и да се сведе  до минимум  използването  на 
животни . Информация , която  ще помогне  за съставянето  на план  на 
изследването , включва  идентичност , химична  структура  и физични  и 
химични  свойства  на изпитвания  химикал ; всякаква  информация  за 
начина  на действие ; резултатите  от всякакви  изпитвания  за токсичност , 
извършени  in vitro  или in vivo ; очаквани  употреби  и потенциал  за 
експозиция  на човека ; налични  данни  за (количествена ) зависимост  
структура -активност  и токсикологични  данни  за химикали  със сходна  
структура ; достъпни  токсикокинетични  данни  (данни  за кинетика  на 
еднократна , а също  и на повтаряща  се доза, където  са достъпни ) и 
данни , получени  от други  изследвания  с повтаряща  се експозиция . 
Определянето  на хроничната  токсичност  трябва  да се извършва  само  
след  получаване  на първоначална  информация  относно  токсичността  от 
28-дневно  и/или 90-дневно  изпитвания  за токсичност  при повтаряща  се 
доза. Поетапният  подход  за изпитван e за хронична  токсичност  следва  
да се разглежда  като част от цялостната  оценка  на възможните  небл­  
агоприятни  въздействия  на даден  изпитван  химикал  върху  здравето  (11) 
(12) (13) (14).  
8. Статистическите  методи , които  са най-подходящи  за анализ  на резулт­  
атите , като се имат  предвид  планът  на изследването  и целите , следва  да 
бъдат  определени  преди  началото  на изследването . Въпросите , които  
трябва  да бъдат  разгледани , включват  проверка  дали  статистическите  
данни  следва  да включват  корекция  за преживяемост  и анализ  в случай  
на преждевременно  прекратяване  на използването  на една  или повече  
групи . Насоки  относно  подходящите  статистически  анализи  и ключови  
препратки  към международно  приети  статистически  методи  са дадени  в 
Ръководство  № 116 (6), също  и в Ръководство  № 35 за анализ  и оценка  
на изследвания  за хронична  токсичност  и канцерогенност  (15).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 440
 
9. При провеждане  на изследването  за хронична  токсичност  ръководните  
принципи  и съображенията , формулирани  в Ръководство  № 19 на ОИСР  
относно  признаването , оценяването  и използването  на клинични  
признаци  като хуманен  край  за опитни  животни , използвани  за оценка  
на безопасността  (16), и по-специално  точка  62 от него, следва  винаги  да 
бъдат  спазвани . В тази точка  е посочено , че „при изследвания , 
включващи  прилагане  на повтарящи  се дози, когато  дадено  животно  
показва  клинични  признаци , които  са прогресивни , водещи  до по- 
нататъшно  влошаване  на състоянието , следва  да се вземе  
информирано  решение  дали  да се разреши  или не животното  да бъде  
умъртвено  по хуманен  начин . Решението  следва  да включва  
съображение  относно  стойността  на информацията , която  ще бъде  
получена  от продължаване  на изследването  с даденото  животно  във 
връзка  с общото  му състояние . Ако се вземе  решение  за продължаване  
на изпитването  с животното , честотата  на наблюденията  трябва  да 
се увеличи  доколкото  е необходимо . Би било  възможно  също  така , без 
да се засяга  неблагоприятно  целта  на изпитването , временно  да бъде  
преустановено  дозирането , ако това  ще допринесе  за премахване  на 
болката  или дистреса , или да бъде  намалена  дозата  на изпитването .“ 
10. Подробни  насоки  относно  принципите  на избора  на доза за 
изследванията  за хронична  токсичност  и канцерогенност , както  и диск­  
утирането  им, могат  да бъдат  намерени  в Ръководство  № 116 (6), както  и 
в две публикации  на Международния  институт  за науките  за живота  (17) 
(18). Основната  стратегия  за избор  на доза зависи  от основната  цел или 
цели  на изследването  (точка  6). При избора  на подходящи  нива  на доза 
следва  да се постигне  равновесие  между  скрининга  за опасност , от една  
страна , и характеризирането  на отговорите  на ниски  дози  и тяхната  
уместност , от друга  страна . Това  важи  особено  за случаите , в които  
следва  да се проведе  комбинирано  изследване  за хронична  токсичност  
и за канцерогенност  (глава  Б.33 от настоящото  приложение ) (точка  11).  
11. Следва  да се разгледа  възможността  за провеждане  на комбинирано  
изследване  за хронична  токсичност  и канцерогенност  (глава  Б.33 от 
настоящото  приложение ), вместо  отделно  провеждане  на изследване  
за хронична  токсичност  (настоящият  метод  за изпитване  Б.30) и на 
изследване  за канцерогенност  (глава  Б.32. от настоящото  приложение ). 
Комбинираното  изпитване  осигурява  по-голяма  ефикасност  по 
отношение  на време  и разходи  в сравнение  с провеждането  на две 
отделни  изследвания , без да се прави  компромис  с качеството  на 
данните  нито  във фазата  на изпитване  за хронична  токсичност , нито  
във фазата  за канцерогенността . Следва  обаче  да се обърне  особено  
внимание  на принципите  на избора  на доза (точка  9 и 20—25), 
когато  се предприема  комбинирано  изследване  за хронична  токсичност  
и канцерогенност  (глава  Б.33точкаот  настоящото  приложение ), и също  
така се признава , че по някои  нормативни  уредби  може  да се изискват  
отделни  изследвания . 
12. Определенията , използвани  в контекста  на настоящия  метод  за 
изпитване , са дадени  в края  на тази глава  и в Ръководство  № 116 (6).  
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
13. Изпитваният  химикал  се прилага  ежедневно , в постепенно  нарастващи  
дози , на няколко  групи  опитни  животни , обикновено  за срок  от 12 
месеца , въпреки  че по-дълги  или по-кратки  продължителности  също  
могат  да бъдат  избрани  в зависимост  от нормативните  изисквания  
(вж. точка  33). Тази  продължителност  е избрана  да бъде  достатъчно  
дълга , за да позволи  проявяване  на всякакви  ефекти  от кумулативна  
токсичност  без водещите  до невъзможност  за разграничаване  ефекти , 
внасяни  от старчески  изменения . Отклоненията  от продължителността  
на експозиция  от 12 месеца  трябва  да бъдат  обосновани , особено  в 
случаите  с по-кратка  продължителност . Изпитваният  химикал  обик­  
новено  се прилага  по орален  път, въпреки  че изпитването  по инхал­  
аторен  или дермален  път може  също  да е подходящо . Планът  на 
изследването  може  също  да включва  едно  или повече  междинни  
умъртвявания , например  на 3 и 6 месеца , като могат  да бъдат  
включени  допълнителни  групи  животни  за да се съобрази  това (вж. 
точка  19). По време  на периода  на прилагането  животните  се набл­  
юдават  отблизо  за признаци  на токсичност . Животните , които  умират  
или са умъртвени  по време  на изпитването , се аутопсират , а 
преживелите  животни  се умъртвяват  и се аутопсират  при прик­  
лючването  на изпитването . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 441
 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
14. Настоящият  метод  за изпитване  основно  обхваща  оценка  на хроничната  
токсичност  при гризачи  (вж. точка  2), въпреки  че се признава , че 
подобни  изследвания  с животни , различни  от гризачи , могат  да се 
изискват  по силата  на някои  нормативни  уредби . Изборът  на вида  
следва  да се обоснове . Планирането  и провеждането , при необход­  
имост , на изследвания  за хронична  токсичност  върху  видове , 
различни  от гризачи , следва  да се основава  на принципите , залегнали  
в настоящия  метод  за изпитване  заедно  с тези от глава  Б.27 от 
настоящото  приложение  („Изследване  на субхронична  орална  токс­  
ичност  — 90-дневно  изследване  на токсичността  при не гризачи  с 
повтаряща  се доза“) (5). Допълнителна  информация  за избора  на вид 
и порода  е представена  в Ръководство  № 116 (6).  
15. За настоящия  метод  за изпитване  предпочитаният  вид гризачи  е 
плъхът , въпреки  че могат  да се използват  и други  видове  от гризачи , 
например  мишки . Плъховете  и мишките  са предпочитани  опитни  
модели  поради  тяхната  относително  кратка  продължителност  на 
живота , широкото  им използване  при фармакологични  и токсик­  
ологични  изследвания , тяхната  склонност  към образуване  на тумори , 
както  и наличието  на достатъчно  характеризирани  породи . В резултат  
на тези характеристики  е налично  голямо  количество  информация  
относно  тяхната  физиология  и патология . Следва  да се използват  
здрави  млади  полово  зрели  животни  от обичайно  използваните  за 
лабораторни  изследвания  породи . Изследването  за хронична  токс­  
ичност  трябва  да се провежда  върху  животни  от една  и съща  порода  
и източник  като тези, които  са използвани  при предварителното (ите) 
изследване (ия) за токсичност  с по-малка  продължителност . Женските  
индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
16. Животните  могат  да бъдат  настанени  в клетките  индивидуално  или на 
малки  групи  от един  и същ пол; индивидуалното  настаняване  следва  да 
бъде  разгледано  само  ако е научно  обосновано  (19) (20) (21). Клетките  
трябва  да бъдат  подредени  по такъв  начин , че възможните  ефекти  в 
резултат  на местоположението  на клетката  да бъдат  сведени  до 
минимум . Температурата  в стаята  на опитните  животни  трябва  да бъде  
22 °C (± 3 °C). Въпреки  че относителната  влажност  трябва  да е най- 
малко  30 % и за предпочитане  да не надвишава  70 %, освен  по време  на 
почистване  на помещението , целта  следва  да е 50—60 %. Осветлението  
следва  да бъде  изкуствено , като последователността  е 12 часа светлина , 12 
часа тъмнина . За храненето  могат  да се използват  обичайните  лабораторни  
хранителни  режими  с неограничен  достъп  до вода  за пиене . Хранителният  
режим  следва  да отговаря  на всички  изисквания  към храната  за съответния  
изпитван  вид, а съдържанието  в храната  на замърсители , включващи , но 
без да се ограничават  до остатъци  от пестициди , устойчиви  органични  
замърсители , фитоестрогени , тежки  метали  и микотоксини , които  биха  
могли  да окажат  въздействие  върху  резултата  от изпитването , трябва  да 
е възможно  най-ниско . Следва  периодично  да се генерира  аналитична  
информация  относно  равнищата  на хранителните  вещества  и 
замърсителите  в хранителния  режим , най-малко  в началото  на 
изследването  и когато  има промяна  в използваната  партида , и същата  
следва  да бъде  включена  в окончателния  доклад . По подобен  начин  
следва  да бъде  предоставена  аналитична  информация  за питейната  вода , 
използвана  в изследването . Изборът  на хранителен  режим  може  да бъде  
повлиян  от необходимостта  да се осигури  подходящо  смесване  с 
изпитвания  химикал  и да бъдат  изпълнени  изискванията  за хранене  на 
животните , когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранителния  
режим . 
Подготовка  на животните  
17. Следва  да се използват  здрави  животни , които  предварително  са се 
аклиматизирали  към лабораторните  условия  в продължение  най-малко  
на 7 дни и върху  които  не са извършвани  предходни  опитни  
процедури . При гризачите  дозирането  на животните  следва  да 
започне  колкото  е възможно  по-скоро  след  отбиването  и аклиматиз­  
ацията  и, за предпочитане , преди  животните  да навършат  8 седмици . 
Опитните  животни  трябва  да се опишат  по отношение  на вид, порода , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 442
 
източник  за доставка , пол, телесно  тегло  и възраст . При започване  на 
изследването  колебанието  на индивидуалните  стойности  на телесното  
тегло  на използваните  животни  трябва  да бъде  минимално  и да не 
превишава  ± 20 % от средното  тегло  на всички  животни  от същия  
пол в рамките  на изследването . Животните  се разпределят  на случаен  
принцип  в контролни  групи  и групи  за третиране . След  прилагането  на 
подбора  на случаен  принцип  следва  да няма  значителни  разлики  между  
средните  стойности  на телесното  тегло  в отделните  групи  в рамките  на 
съответния  пол. Ако съществуват  статистически  значими  разлики , 
тогава  стъпката  по подбор  на случаен  принцип  трябва  да се повтори , 
ако е възможно . За всяко  животно  се определя  уникален  идентифик­  
ационен  номер  и му се поставя  постоянна  маркировка  с този номер  
чрез поставяне  на татуировка , имплантиране  на микрочип  или чрез 
друг  подходящ  метод . 
ПРОЦЕДУРА  
Брой  и пол на животните  
18. Следва  да се използват  и двата  пола . Следва  да се използва  достатъчен  
брой  животни  по такъв  начин  че, при приключване  на изследването , на 
разположение  за подробна  биологична  и статистическа  оценка  да са 
достатъчно  животни  във всяка  група . За гризачи  най-малко  20 
животни  от пол за група  следва  да се използват  по принцип  при 
всяко  ниво  на доза, докато  за животни , различни  от гризачи  се 
препоръчва  използване  най-малко  на 4 от пол за група . При 
изследвания , включващи  мишки , могат  да бъдат  необходими  допълн­  
ителни  животни  във всяка  дозирана  група  за извършване  на всички  
изисквани  хематологични  определяния . 
Планиране  на междинни  умъртвявания , сателитни  групи  и 
животни  от индикаторна  група  
19. Проучването  може  да предвижда  междинни  умъртвявания  (най-малко  
10 животни  от пол от група ), например  на 6 месеца , за предоставяне  на 
информация  за напредването  на токсикологични  изменения  и меха­  
нистична  информация , ако е научно  обосновано . Когато  такава  
информация  вече е достъпна  от предходни  изследвания  на изпитвания  
химикал  за токсичност  при повтарящи  се дози , възможно  е междинните  
умъртвявания  да не са научно  обосновани . Могат  да бъдат  включени  
също  и сателитни  групи , за мониторинг  на обратимостта  на всякакви  
токсикологични  промени , причинени  от изпитвания  химикал , който  е 
предмет  на проучването ; те обичайно  са ограничени  до най-високото  
ниво  на доза за изследването , плюс  контрол . Допълнителна  индик­  
аторна  група  от животни  (обикновено  по 5 животни  от всеки  от 
двата  пола ) може  също  да бъде  включена , за мониторинг  на здравния  
статус  по време  на изследването , ако е необходимо  (22). Ако се 
планира  междинно  умъртвяване  или включване  на сателитна  група  
или индикаторна  група , броят  на животните , включени  в плана  на 
изследването , трябва  да бъде  увеличен  с броя  животни , които  се 
планира  да бъдат  умъртвени  преди  приключване  на изследването . 
Тези  животни  обичайно  трябва  да преминат  през същите  наблюдения , 
както  животните  във фаза  хронична  токсичност  на основното  
изследване , включително  телесно  тегло , консумация  на храна /вода , 
хематологични  измервания , клинична  биохимия  и проучване  на 
патологията , въпреки  че също  така може  да се постанови  (в групите  
за междинно  умъртвяване ) измерванията  да се ограничат  до спец­  
ифични  ключови  измервания  като невротоксичност  или имунот­  
оксичност . 
Групи  с определени  дози  и дозиране  
20. Насоки  по всички  аспекти  на избора  на доза и интервалите  между  
нивата  на доза са предоставени  в Ръководство  № 116 (6). Следва  да 
се използват  най-малко  три нива  на доза и паралелен  контрол , с 
изключение  на случаите , когато  се извършва  изпитване  при пределна  
концентрация  (вж. точка  27). Нивата  на доза обичайно  са основани  на 
резултатите  от по-краткосрочни  изследвания  при повтаряща  се доза, 
или на изследвания  за определяне  на обхвата , и следва  да са 
съобразени  с всякакви  достъпни  токсикологични  и токсикокинетични  
данни  за изпитвания  химикал  или за свързани  с него  химикали . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 443
 
21. Освен  ако не е ограничено  от физичното  или химичното  естество , или 
от биологичните  ефекти  на изпитвания  химикал , най-високото  ниво  на 
доза обичайно  следва  да се избере  така, че да се установят  основните  
прицелни  органи  и токсични  ефекти , като същевременно  се избягва  
страдание , силна  токсичност , заболяемост  или смърт . Като  се вземат  
предвид  факторите , изложени  в точка  22 по-долу , най-високото  ниво  на 
доза трябва  да бъде  избрано  така, че да предизвиква  признаци  на токс­  
ичност , доказвани  например  с потискане  наддаването  на тегло  (около  
10 %).  
22. Въпреки  това, в зависимост  от целите  на изследването  (вж. точка  6), 
може  да бъде  избрана  максимална  доза, която  да е по-ниска  от дозата , 
доказваща  наличието  на токсичност , например , ако при дадена  доза се 
проявява  неблагоприятен  ефект , който  дава повод  за загриженост , но 
който  има незначително  влияние  върху  продължителността  на живота  
или телесното  тегло . Максималната  доза не трябва  да надвишава  1 000 
mg на kg телесно  тегло  дневно  (пределна  доза, вж. точка  27).  
23. Нивата  на доза и интервалите  между  тях могат  да бъдат  избрани  така, 
че да бъдат  установени  зависимост  доза-отговор  и NOAEL, или други  
очаквани  резултати  от изследването , например  BMD (вж. точка  25) при 
най-ниското  ниво  на доза. Фактори , които  следва  да бъдат  разгледани  
при поставянето  на по-ниски  дози , включват  очаквания  наклон  на 
кривата  доза-отговор , дозите , при които  могат  да настъпят  важни  
промени  в метаболизма  или в начина  на токсично  действие , когато  
се очаква  праг , или когато  се очаква  отправна  точка  за екстраполиране  
на ниски  дози . 
24. Избраните  интервали  между  нивата  на доза зависят  от 
характеристиките  на изпитвания  химикал  и не могат  да бъдат  
предписани  в настоящия  метод  за изпитване , но от двукратни  до 
четирикратни  интервали  често  дават  добри  параметри  на изпитването , 
когато  се използват  за определяне  на намаляващите  нива  на доза и 
добавянето  на четвърта  група  за изпитване  често  се предпочита  пред  
използване  на големи  интервали  (например  с кратност , надвишаваща  
6—10 пъти ) между  дозирането . По принцип  използване  на кратност  
над 10 следва  да се избягва  и, ако се използва , следва  да бъде  обос­  
новано . 
25. Както  е допълнително  разгледано  в Ръководство  № 116 (6), точки , 
които  трябва  да бъдат  взети  предвид  при избора  на доза, включват : 
— познати  или предполагаеми  нелинейни  зависимости  или инфлексни  
точки  в зависимостта  доза-отговор ; 
— токсикокинетика  и обхвати  на дозиране , при които  се получава , или 
не се получава , метаболитна  индукция , насищане  или нелинейна  
зависимост  между  външни  и вътрешни  дози ; 
— увреждания -прекурсори , маркери  на ефект  или показатели  за 
протичане  в дълбочина  на ключови  биологични  процеси ; 
— ключови  (или предполагаеми ) аспекти  на начина  на действие , като 
например  дози , при които  започва  да се проявява  цитотоксичност , 
появяват  се нарушения  в хормоналните  равнища  и механизмите  на 
хомеостазата , и др.; 
— области  от кривата  доза-отговор , в които  е необходима  особено  
устойчива  оценка , напр . в обхвата  на очакваната  BMD или на 
предполагаем  праг ; 
— съобразяване  на очаквани  нива  на експозиция  на човека . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 444
 
26. Контролната  група  не се третира  или е контролна  група  за носителя  в 
случаите , когато  за въвеждането  на изпитвания  химикал  се използва  
носител . С изключение  на самата  обработка  с изпитвания  химикал , 
животните  в контролната  група  следва  да се третират  по същия  
начин  като тези от групите  за изпитване . Когато  се използва  носител , 
животните  от контролната  група  се третират  с най-големия  обем  
носител  измежду  обемите , при които  се третират  групите  на дози . 
Ако изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранителен  режим  и 
причинява  значително  намаляване  на приема  на храна  поради  
понижени  вкусови  качества  на хранителния  режим , може  да бъде  
полезна  допълнителна  контролна  група , получаваща  същото  количество  
храна , която  да служи  като по-подходяща  контрола . 
27. Ако въз основа  на информация  от предварителни  изследвания  може  да 
се очаква , че изпитването  при едно  ниво  на доза, равностойно  най- 
малко  на 1 000 mg на kg телесно  тегло  на ден, и при използване  на 
процедурите , описани  за това изследване , вероятно  няма  да доведе  до 
неблагоприятни  въздействия  и ако, въз основа  на данни  от структурно  
свързани  химикали , не се очаква  токсичност , то цялостно  изследване  с 
използване  на три нива  на доза може  да не се счита  за необходимо . 
Като  горна  граница  може  да се приложи  1 000 mg на kg телесно  тегло  
на ден, с изключение  на случаите , при които  експозиция  на хора  
подсказва  нуждата  от използване  на по-високо  ниво  на доза. 
Приготвяне  на дозите  и прилагане  на изпитвания  химикал  
28. Изпитваният  химикал  обичайно  се прилага  през устата , чрез 
хранителния  режим  или питейната  вода , или чрез хранене  през сонда . 
Допълнителна  информация  за пътища  и начини  на прилагане  е 
представена  в Ръководство  № 116 (6). Пътят  и начинът  на прилагане  
зависят  от целта  на изследването , физичните  и химичните  свойства  на 
изпитвания  химикал , неговата  биодостъпност  и преобладаващия  път и 
начин  на експозиция  на хора . Следва  да се представи  обосновка  за 
избрания  път и начин  на прилагане . С оглед  на хуманното  
отношение  към животните , храненето  по орален  път през сонда  
обичайно  следва  да се избере  само  за онези  агенти , за които  този път 
и начин  на прилагане  е в разумна  степен  представителен  за потенци­  
алната  експозиция  на хора  (напр . фармацевтични  продукти ). За 
химикали , свързани  с хранителния  режим  или с околната  среда , включ­  
ително  пестициди , прилагането  е обичайно  чрез хранителен  режим  или 
чрез питейната  вода . Въпреки  това, при някои  сценарии , напр . проф­  
есионална  експозиция , прилагане  по други  пътища  може  да бъде  по- 
подходящо . 
29. Когато  е необходимо , изпитваният  химикал  е в разтвор  или в суспензия  
в подходящ  носител . Трябва  да бъдат  разгледани  следните  
характеристики  на носителя  и, съответно , други  добавки : ефекти  
върху  абсорбцията , разпределението , метаболизма  или задържането  на 
изпитвания  химикал ; ефекти  върху  химичните  свойства  на изпитвания  
химикал , които  могат  да изменят  токсикологичните  му характеристики ; 
и ефектите  върху  консумирането  на храна  или вода , или хранителния  
статус  на животните . Препоръчва  се, когато  е възможно , най-напред  да 
се прецени  дали  може  се използва  воден  разтвор /суспензия , след  това 
— разтвор /емулсия  в масло  (напр . царевично  олио ), а след  това — 
разтваряне  в други  носители . Когато  се използват  други  носители  
освен  водата , трябва  да се познават  токсикологичните  свойства  на 
носителя . Следва  да е достъпна  информация  относно  стабилността  на 
изпитвания  химикал  и хомогенността  на разтворите  за дозиране  или на 
храната  (в зависимост  от случая ) при условията  на прилагане  (напр . 
чрез хранителен  режим ). 
30. За химикали , които  се прилагат  чрез хранителен  режим  или вода  за 
пиене , е важно  да се гарантира , че количеството  изпитван  химикал  не 
въздейства  върху  нормалното  хранене  и водния  баланс . При 
дългосрочни  изследвания  за токсичност  с прилагане  чрез хранителния  
режим  концентрацията  на изпитвания  химикал  в храната  по принцип  
не трябва  да надвишава  горна  граница  от 5 % от общото  количество  
храна , с цел да се избегне  небалансирано  хранене . Когато  изпитваният  
химикал  се прилага  с храната , може  да се използва  или постоянна  
концентрация  в храната  (mg/kg храна  или ppm), или постоянно  ниво  
на доза от гледна  точка  на телесното  тегло  на животното  (mg на kg 
телесно  тегло ), изчислявани  на седмична  основа . Използваната  
алтернатива  трябва  да бъде  посочена . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 445
 
31. В случай  на въвеждане  през устата , животните  се третират  с 
изпитвания  химикал  ежедневно  (седем  дни в седмицата , всяка  
седмица ), обикновено  за период  от 12 месеца  (вж. също  точка  33), 
макар  че според  нормативните  изисквания  може  да се изисква  и по- 
голяма  продължителност . Необходимо  е да се обосноват  причините  за 
използването  на всякакъв  друг  режим  на дозиране , например  пет дни в 
седмицата . В случай  на прилагане  по дермален  път животните  
обичайно  са третирани  с изпитвания  химикал  в продължение  на най- 
малко  6 часа в денонощието , 7 дни в седмицата , както  е определено  в 
глава  Б.9 от настоящото  приложение  (10), за период  от 12 месеца . 
Експозицията  по инхалаторен  път се извършва  в продължение  на 6 
часа в денонощието , 7 дни в седмицата , но експозиция  за 5 дни 
седмично  също  може  да бъде  прилагана , ако е обоснована . Периодът  
на експозицията  по принцип  е с продължителност  от 12 месеца . Ако 
експозиция  на вид гризач , различен  от плъх , е само  през носа , макс­  
ималната  продължителност  на експозицията  може  да бъде  адаптирана  
така, че да се минимизира  специфичният  за този вид дистрес . Трябва  да 
бъде  предоставена  обосновка  при използване  на продължителност  на 
експозицията  по-малка  от 6 часа дневно . Вж. също  глава  Б.8 от 
настоящото  приложение  (8). 
32. Когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез сонда  на животните , това 
следва  да се извърши  посредством  стомашна  тръбичка  или подходяща  
канюла  за интубация , по едно  и също  време  всеки  ден. Обикновено  
еднократната  доза се прилага  веднъж  дневно , но когато  например  даден  
химикал  е местен  дразнител , може  да е възможно  поддържането  на 
ежедневната  доза да се извършва  чрез прилагането  ѝ като разделена  
доза (два пъти  дневно ). Максималният  обем  течност , който  може  да 
бъде  въведен  еднократно , зависи  от телесното  тегло  на изпитваното  
животно . Обемът  следва  да се запазва  възможно  най-нисък  и по 
принцип  не следва  да надхвърля  1 ml/100 g телесно  тегло  за гризачи  
(22). Варирането  на обема  за изпитването  следва  да бъде  сведено  до 
минимум  чрез настройване  на концентрацията  така, че да се осигури  
постоянен  обем  при всички  нива  на доза. Потенциално  корозивните  
или дразнещи  химикали  са изключение  и трябва  да бъдат  разредени , 
за да се избегнат  силни  локални  ефекти . Изпитването  при конце­  
нтрации , за които  съществува  вероятност  да причиняват  корозивно  
или дразнещо  действие  върху  стомашно -чревния  тракт , следва  да се 
избягва . 
Продължителност  на изпитването  
33. Настоящият  метод  за изпитване  е планиран  предимно  като 12-месечно  
изследване  за хронична  токсичност , като планът  на изследването  
допуска  също  така, и може  да бъде  прилаган  или за изследвания  с по- 
малка  продължителност  (напр . 6 или 9 месеца ), или за такива  с по- 
голяма  (напр . 18 или 24 месеца ), в зависимост  от изискванията  на специф­  
ичната  нормативна  уредба  или за конкретни  механистични  цели . 
Отклоненията  от продължителността  на експозиция  от 12 месеца  трябва  
да бъдат  обосновани , особено  в случаите  с по-кратка  продължителност . 
Сателитните  групи , включени  за мониторинг  на обратимостта  на всякакви  
токсикологични  промени , индуцирани  от изпитвания  химикал , предмет  на 
проучването , следва  да бъдат  оставени  без дозиране  за период  не по-кратък  
от 4 седмици  и не по-дълъг  от една  трета  от общата  продължителност  на 
изследването  след приключването  на експозицията . Допълнителни  насоки , 
включително  разглеждането  на преживяемостта  в изследването , са 
представени  в Ръководство  № 116 (6).  
НАБЛЮДЕНИЯ  
34. Всички  животни  трябва  да бъдат  проверени  за заболяемост  или 
смъртност , обикновено  в началото  и в края  на всеки  ден, включително  
в съботни  и неделни  дни и празници . Поне  един  път на ден се правят  
общи  клинични  наблюдения , за предпочитане  по едно  и също  време , 
като се взема  предвид  периодът  с пикови  стойности  на очакваните  
въздействия  след  получаване  на дозата  в случаите  на прилагане  чрез 
хранене  през сонда . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 446
 
35. Следва  да се провеждат  подробни  клинични  наблюдения  на всички  
животни  най-малко  веднъж  преди  първата  експозиция  (за да се даде  
възможност  за интрасубектни  сравнения ), в края  на първата  седмица  на 
изследването  и месечно  след  това. Протоколът  от наблюденията  трябва  
да бъде  изготвен  така, че колебанията  на стойностите  между  
извършващите  наблюденията  да са сведени  до минимум  и да са 
независими  от изпитваната  група . Тези  наблюдения  следва  да се 
правят  извън  клетката , която  обитава  животното , за предпочитане  в 
стандартна  обстановка  и във всички  случаи  по едно  и също  време . 
Тези  наблюдения  следва  да се описват  внимателно , за предпочитане  с 
използване  на точкови  системи , изрично  определени  от лабораторията , 
извършваща  изпитвания . Трябва  да бъде  направено  усилие  да се 
осигурят  минимални  колебания  в условията  за наблюдение . 
Отбелязваните  симптоми  следва  да включват , но не и да се 
ограничат  до промяна  в кожата , козината , очите , мукозните  мембрани  
(лигавиците ), поява  на секреция  и екскреция , както  и автономна  
активност  (напр . сълзене , пилоерекция , промяна  в големината  на 
зениците  и необичаен  начин  на дишане ). Следва  да се записват  също  
и изменения  в походката , стойката  и реакцията  при боравене , както  и 
наличието  на клонични  или тонични  движения , стереотипно  (например  
прекомерно  поддържане  на външния  вид, повтарящо  се обикаляне  в 
кръг ) или необичайно  поведение  (например  самоосакатяване , вървене  
назад ) (24).  
36. Преди  първото  прилагане  на изпитвания  химикал  на всички  животни  
следва  да бъдат  извършени  офталмологични  изследвания  с използване  
на офталмоскоп  или друго  подходящо  устройство . За предпочитане  е, 
при прекратяване  на изследването , това изследване  да се проведе  върху  
всички  животни , но най-малко  върху  групите , експонирани  на високата  
доза, и върху  контролните  групи . Ако се открият  свързани  с 
третирането  изменения  в очите , всички  животни  трябва  да бъдат  
изследвани . Ако от структурен  анализ  или от друга  информация  се 
предполага  токсичност  за очите , тогава  честотата  на изследванията  на 
очите  следва  да бъде  увеличена . 
37. За химикали , за които  в предходни  28-дневни  и/или 90-дневни  
изпитвания  за токсичност  с повтаряща  се доза има показания  за 
потенциал  за предизвикване  на невротоксични  ефекти , като опция  
изследвания  на сензорната  реактивност  към различни  видове  стимули  
(24) (напр . слухови , зрителни  и проприоцептивни ) (25) (26) (27), оценка  
на силата  на захвата  (28) и на двигателната  активност  (29) могат  да 
бъдат  извършени  преди  започването  на изследването  и на 3-месечни  
периоди  след  началото  на изследването , включително  до изтичане  на 
12 месеца , както  и при прекратяване  на изследването  (ако продължит­  
елността  му е над 12 месеца ). Допълнителни  уточнения  по 
процедурите , които  могат  да бъдат  следвани , са дадени  в съответните  
препратки . Въпреки  всичко  могат  да се използват  и алтернативни  
процедури , различни  от тези, към които  се препраща . 
38. За химикали , за които  в предходни  28-дневни  и/или 90-дневни  
изпитвания  за токсичност  с повтаряща  се доза има показания  за 
потенциал  за предизвикване  на имунотоксични  ефекти , като опция  
по-нататъшни  проучвания  на тази крайна  точка  могат  да бъдат  
извършени  при прекратяването . 
Телесно  тегло , консумация  на храна /вода  и усвояване  на храната  
39. Всички  животни  трябва  да бъдат  претегляни  в началото  на 
третирането , след  това най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . 
Измерването  на консумацията  на храна  и на усвояването  на храната  
следва  да се извършва  най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . Консум­  
ацията  на вода  трябва  да се измерва  най-малко  веднъж  седмично  в 
продължение  на първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  
месечно , ако химикалът  се прилага  чрез питейната  вода . Измервания  
на консумацията  на вода  също  следва  да бъдат  предвидени  при 
изследвания , при които  питейната  активност  се изменя . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 447
 
Хематология  и клинична  биохимия  
40. При изследвания , включващи  гризачи , трябва  да се извършват  хемат­  
ологични  проучвания  върху  поне  10 мъжки  и 10 женски  животни  на 
група , на 3, 6 и 12 месеца , както  и при прекратяването  на изследването  
(ако е по-дълго  от 12 месеца ), като през цялото  време  се използват  
същите  животни . При мишките  може  да са необходими  сателитни  
животни  за осъществяването  на всички  изисквани  хематологични  
определяния  (вж. точка  18). При изследвания  с използване  на 
животни , различни  от гризачи , се вземат  проби  от по-малък  брой  
животни  (например  4 животни  от пол за група  при изследвания  с 
използване  на кучета ), на междинни  времена  на пробовземане  и при 
прекратяване  на изпитването , както  е описано  за гризачите . 
Измервания  на 3 месеца , както  при гризачи , така и при животни , 
различни  от гризачи , не е необходимо  да се провеждат , ако в 
предходно  90-дневно  изследване , проведено  при сравними  нива  на 
доза, не е наблюдавано  въздействие  върху  хематологичните  параметри . 
Кръвните  проби  се вземат  от избран  обект , например  чрез сърдечна  
пункция , или от ретроорбиталния  синус , под упойка . 
41. Параметрите  от следния  списък  следва  да бъдат  изследвани  (30): Общ  и 
диференциален  брой  левкоцити , брой  на еритроцитите , брой  на тром­  
боцитите , концентрация  на хемоглобин , хематокрит , среден  обем  на 
еритроцитите  (MCV), средно  съдържание  на хемоглобин  (MCH), 
средна  концентрация  на хемоглобин  в еритроцитите  (MCHC), 
протромбиново  време  и активирано  парциално  тромбопластиново  
време . Други  хематологични  параметри , като телца  на Heinz или 
друга  нетипична  морфология  на еритроцити  или метхемоглобин , 
могат  да бъдат  измервани  според  случая  в зависимост  от токсичността  
на изпитвания  химикал . Като  цяло  следва  да се възприеме  гъвкав  
подход , в зависимост  от наблюдаваното  и/или очакваното  въздействие  
от даден  изпитван  химикал . Ако изпитваният  химикал  оказва  влияние  
върху  кръвотворната  система , изследвания  на броя  на ретикулоцитите  
и цитологията  на костния  мозък  може  също  така да бъдат  необходими , 
макар  че не е нужно  същите  да се провеждат  рутинно . 
42. Клиничните  биохимични  определяния  за проучване  на главните  
токсични  ефекти  върху  тъканите , и по-специално  върху  бъбреците  и 
черния  дроб , следва  да се извършват  върху  кръвни  проби , получени  от 
поне  10 мъжки  и 10 женски  животни  от група  в интервали  от време , 
идентични  с интервалите  при хематологичните  изследвания , като през 
цялото  време  се използват  същите  животни . При мишките  може  да са 
необходими  сателитни  животни  за осъществяването  на всички  
изисквани  клинични  биохимични  определяния . При изследвания  с 
използване  на животни , различни  от гризачи , се вземат  проби  от по- 
малък  брой  животни  (например  4 животни  от пол за група  при 
изследвания  с използване  на кучета ), на междинни  времена  на 
пробовземане  и при прекратяване  на изпитването , както  е описано  за 
гризачите . Измервания  на 3 месеца , както  при гризачи , така и при 
животни , различни  от гризачи , не е необходимо  да се провеждат , ако 
в предходно  90-дневно  изследване , проведено  при сравними  нива  на 
доза, не е наблюдавано  въздействие  върху  клиничните  биохимични  
параметри . Препоръчва  се гладуване  през нощта  за животните  (с 
изключение  на мишки ) преди  вземането  на кръвните  проби . Трабва  
да бъдат  изследвани  параметрите  от следния  списък  (30): глюкоза , 
уреа  (азот в уреа ), креатинин , общо  белтъци , албумин , калций , 
натрий , калий , общо  холестерол , най-малко  две подходящи  изпитвания  
за хепатоцелуларна  оценка  (аланинаминотрансфераза , аспартатами­  
нотрансфераза , глутаматдехидрогеназа , общо  жлъчни  киселини ) (31) и 
най-малко  две подходящи  изпитвания  за хепатобилиарна  оценка  
(алкална  фосфатаза , гама -глутамилтрансфераза , 5’-нуклеотидаза , общо  
билирубин , общо  жлъчни  киселини ) (31). Други  клинични  химични  
параметри , като триглицериди  на гладно , специфични  хормони  и 
холинестераза , могат  да бъдат  измервани  според  случая  в зависимост  
от токсичността  на изпитвания  химикал . Като  цяло  е необходим  гъвкав  
подход , в зависимост  от наблюдаваното  и/или очакваното  въздействие  
от даден  изпитван  химикал . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 448
 
43. Изследвания  на урината  следва  да се извършат  най-малко  на 10 мъжки  
и 10 женски  животни  от група  чрез проби , събрани  през същите  
интервали , както  за хематологичните  и клиничните  химични  
изследвания . Измервания  на 3 месеца  не е необходимо  да се провеждат , 
ако в предходно  90-дневно  изследване , проведено  при сравними  нива  
на доза, не е наблюдавано  въздействие  върху  изследванията  на урина . 
Следният  списък  с параметри  е бил включен  в експертна  препоръка  
относно  изследванията  на клиничната  патология  (30): външен  вид, 
обем , осмолалност  или относителна  плътност , рН, общо  белтъци  и 
глюкоза . Други  определяния  включват  кетон , уробилиноген , 
билирубин  и скрити  кръвоизливи . Когато  е необходимо , с оглед  
разширяване  на проучването  върху  наблюдаваните  въздействия , могат  
да се използват  и допълнителни  параметри . 
44. Като  цяло  се счита , че базовите  хематологични  и клинични  биох­  
имични  променливи  са необходими  преди  третиране  при изследвания  
с кучета , но не е необходимо  да се определят  при изследвания  с 
гризачи  (30). Ако обаче  базовите  данни  от минали  периоди  (вж. 
точка  50) са неподходящи , следва  да се обмисли  генериране  на 
такива  данни . 
Патология  
Макроскопска  аутопсия  
45. Всички  животни , подложени  на изследване , по принцип  са обект  на 
пълна , подробна  макроскопска  аутопсия , която  включва  внимателен  
преглед  на външната  повърхност  на тялото , всички  отвори  и черепната , 
гръдната  и коремната  кухини  и тяхното  съдържание . Въпреки  това 
също  така може  да бъде  предвидено  (при междинните  умъртвявания  
или сателитните  групи ) измерванията  да се ограничат  до специални  
ключови  мерки , като невротоксичност  или имунотоксичност  (вж. 
точка  19). Тези  животни  не следва  да се подлагат  на аутопсия  и 
следващите  аутопсията  процедури , описани  в следващите  точка . За 
животните  от индикаторната  група  може  да се изисква  аутопсия  за 
всеки  отделен  случай , по преценка  на ръководителя  на изследването . 
46. Теглото  на органите  следва  да се измерва  при всички  животни , 
различни  от изключените  по последната  част от точка  45. 
Надбъбречните  жлези , мозъкът , епидидимите , сърцето , бъбреците , 
черният  дроб , яйчниците , далакът , тестисите , щитовидната  жлеза  (прет­  
еглена  след  фиксиране , с околощитовидни  жлези ), и матката  на всички  
животни  (освен  тези, които  са намерени  умиращи  и/или 
междувременно  умъртвени ) следва  да бъдат  почистени  от каквато  и 
да е допълнителна  тъкан , според  случая , и да бъде  установено  
мокрото  им тегло  възможно  най-бързо  след  дисекцията , за да се 
избегне  изсъхването  им. При изследвания  с използване  на мишки  прет­  
еглянето  на надбъбречните  жлези  е по избор . 
47. Следните  тъкани  следва  да бъдат  консервирани  в среда  за фиксиране , 
най-подходяща  както  за вида  тъкан , така и за очакваното  последващо  
хистопатологично  изследване  (32) (тъканите  в средни  скоби  са по 
избор ): 
всички  макроскопски  
увреждания  сърце  панкреас  стомах  ( предстомах , 
жлезист  стомах ) 
надбъбречна  жлеза  илеум  околощитовидна  
жлеза  [зъби ] 
аорта  празно  черво  периферен  нерв  тестис  
мозък  (включително  
срезове  от главния  мозък , 
малкия  мозък  и моста ) бъбреци  хипофиза  тимус  
цекум  слъзна  жлеза  
(клепачна ) простатна  жлеза  щитовидна  жлеза  
шийка  на матката  черен  дроб  право  черво  [ език] ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 449
 
коагулираща  жлеза  бял дроб  слюнчена  жлеза  трахея  
колон  лимфни  възли  (както  
повърхностни , така и 
дълбоки ) семенно  мехурче  пикочен  мехур  
дванадесетопръстник  млечна  жлеза  (задълж­  
ителна  за женските  и 
— ако очевидно  може  
да им бъде  извършена  
дисекция  — от 
мъжките ) скелетен  мускул  матка  ( включително  
шийката ) 
епидидим  [ горни  дихателни  
пътища , включително  
нос, спирални  кости  
на носа  и допълн­  
ителни  околоносни  
кухини ] кожа  [ уретер ] 
око (включително  ретина ) хранопровод  гръбначен  мозък  (на 
три нива : шийно , 
гръдно  и поясно  ниво ) [уретра ] 
[бедрена  кост и става ] [обонятелна  луковица ] далак  влагалище  
жлъчен  мехур  (за видове , 
различни  от плъх ) яйчници  [ гръдна  кост] срез от костен  мозък  и/или 
костномозъчен  аспират , 
прясно  фиксиран  
Хардерова  жлеза  
В случай  на чифтен  орган , например  бъбреци  и надбъбречни  жлези , 
следва  да се консервират  и двата  органа . Клиничните  и другите  
находки  могат  да посочат  необходимостта  от изследвания  на допълн­  
ителни  тъкани . Също  така всички  органи , които  на основата  на 
познатите  свойства  на изпитвания  химикал  се считат  за вероятни  
прицелни  органи , също  следва  да бъдат  консервирани . При 
изследвания , включващи  дермален  път на прилагане , следва  да бъдат  
консервирани  органите , посочени  в списъка  за прилагане  по орален  
път, като специфично  вземане  на проби  и консервиране  на кожа  от 
мястото  на прилагане  е от съществено  значение . При изследвания  по 
инхалаторен  път списъкът  с тъканите  от дихателните  пътища  за 
консервиране  и изследване  следва  да е в съответствие  с препоръките  
от глави  Б.8. от настоящото  приложение  (8) и Б.29. от настоящото  
приложение  (9). По отношение  на други  органи /тъкани  (и в допълнение  
към специално  консервираните  тъкани  от дихателните  пътища ) 
органите , които  следва  да бъдат  изследвани , са посочени  в списъка  
за прилагане  по орален  път. 
Хистопатология  
48. Достъпни  са насоки  относно  най-до брите  практики  при провеждането  
на изследвания  на токсикологичната  патология  (32). Минималните  
хистопатологични  изследвания  следва  да бъдат : 
— всички  тъкани  от животните  от групата  с висока  доза и от 
контролната  група ; 
— всички  тъкани  от животните , които  са в терминално  състояние  или 
са умъртвени  по време  на изследването ; 
— всички  тъкани , при които  се наблюдават  макроскопски  аномалии ; 
— прицелните  тъкани  или тъканите , които  в групата  с най-висока  доза 
са показали  свързани  с третирането  изменения , от всички  животни  
във всички  групи  с доза, различна  от най-високата ; 
— в случай  на чифтен  орган , например  бъбреци  и надбъбречни  жлези , 
следва  да се изследват  и двата  органа . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 450
 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
49. Следва  да бъдат  посочени  индивидуални  данни  за животните  за всички  
оценени  параметри . Допълнително  всички  данни  следва  да се обобщят  
в таблична  форма , показваща  за всяка  изпитвана  група  броя  на 
животните  при започване  на изпитването , броя  на животните , които  
са открити  мъртви  по време  на изследването  или са били  умъртвени  
по хуманни  причини , и времето  на смъртта  или умъртвяването  по 
хуманни  причини , броя  на животните  с проявени  признаци  на токс­  
ичност , описание  на наблюдаваните  признаци  на токсичност , включ­  
ително  времето  на започването , продължителността  и силата  на 
всички  токсични  въздействия , броя  на животните  с увреждания , типа  
на уврежданията  и процента  на животните , показващи  всеки  отделен  
тип увреждане . В таблици  с обобщени  данни  следва  да се посочат  
средните  стойности  и стандартните  отклонения  (за непрекъснатите  
данни  от изпитвания ) при животни , показващи  токсично  въздействие  
или при които  са налице  увреждания , в допълнение  към степенуването  
на уврежданията . 
50. Контролните  данни  за минали  периоди  могат  да бъдат  полезни  при 
интерпретирането  на резултатите  от изследването , например  в случай , 
когато  има признаци , че данните , предоставени  от паралелни  контроли , 
показват  съществено  несъответствие  при сравнение  с актуални  данни  
от контролни  животни  от една  и съща  извършваща  изпитвания  
лаборатория /колония . Ако контролните  данни  за минали  периоди  са 
оценени , следва  да се представят  от същата  лаборатория , да се 
отнасят  за животни  на една  и съща  възраст  и от една  и съща  порода , 
и да са генерирани  през петте  години , предхождащи  съответното  
изследване . 
51. Където  е приложимо , числовите  резултати  следва  да се оценяват  чрез 
използване  на подходящ  и общоприет  статистически  метод . Статист­  
ическите  методи  и данните , които  следва  да се анализират , трябва  да се 
избират  по време  на планирането  на изследването  (точка  8). Изборът  
трябва  да предвижда  възможност  за корекция  за преживяемост , ако е 
необходимо . 
Доклад  от изпитването  
52. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— физическа  природа , чистота  и физични  и химични  свойства ; 
— данни  за идентифициране  на химикала ; 
— източник  на химикала ; 
— номер  на партидата ; 
— сертификат  за химичен  анализ . 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— обосновка  за избора  на носител  (когато  носителят  е различен  от 
вода ). 
Изпитвани  животни : 
— използван  вид/порода  и обосновка  за направения  избор ; 
— брой , възраст  и пол на животните  в началото  на изпитването ; ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 451
 
— източник , условия  на отглеждане , хранителен  режим  и т.н.; 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на изпитването . 
Условия  на изпитването : 
— обосновка  за пътя  на прилагане  и избора  на доза; 
— когато  е приложимо , използваните  статистически  методи  за анализ  
на данните ; 
— подробна  информация  за състава  на изпитвания  химикал /изг­ 
отвянето  на хранителния  режим ; 
— аналитични  данни  за достигната  концентрация , стабилност  и 
хомогенност  на сместа ; 
— път на прилагане  и подробна  информация  за прилагането  на 
изпитвания  химикал ; 
— за изследвания  по инхалаторен  път, дали  е само  през носа , или на 
цялото  тяло ; 
— действителните  дози  (mg на kg телесно  тегло  дневно ) и коефициент  
на превръщане  от концентрация  на изпитвания  химикал  в храна / 
питейна  вода  (mg на kg или ppm) в действителна  доза, ако е прил­  
ожимо ; 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  за пиене . 
Резултати  (следва  да се представят  обобщени  таблични  данни  и 
индивидуални  данни  за животните ): 
— данни  за преживяемостта ; 
— телесно  тегло /промени  в телесното  тегло ; 
— консумация  на храна , изчисления  на усвояването  на храната , ако са 
извършени , и потребление  на вода , ако е приложимо ; 
— данни  относно  отговор  на токсичност  според  пол и ниво  на доза, 
включително  симптоми  на токсичност ; 
— природа , случаи  на клинични  наблюдения  (и ако е използвана  
точкова  система  — сила ) и продължителност  на клиничните  набл­  
юдения  (независимо  обратими  или необратими ); 
— резултатите  от офталмологичните  изследвания ; 
— хематологични  изпитвания ; 
— клинични  биохимични  изпитвания ; 
— изследвания  на урина ; 
— резултати  от всякакви  изследвания  за невротоксичност  или имунот­  
оксичност ; 
— телесната  маса  при настъпване  на смъртта ; 
— тегло  на органите  (и техните  съотношения , ако е приложимо ); 
— находки  при аутопсията ; 
— подробно  описание  на всички  свързани  с третирането  хистопат­  
ологични  находки ; 
— данни  за абсорбция , ако са налични . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 452
 
Статистическа  обработка  на резултатите , където  е приложимо  
Обсъждане  на резултатите , включително : 
— Зависимости  доза-ефект  
— Разглеждане  на всякаква  информация , свързана  с начин  на действие  
— Обсъждане  на всякакви  подходи  за моделиране  
— Определяне  на BMD, NOAEL или LOAEL  
— Контролни  данни  за минали  периоди  
— Относимост  към човека  
Заключения  
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (1995). Report of the Consultation Meeting on Sub-chronic and 
Chronic Toxicity/Carcinogenicity Testing (Rome, 1995), internal working 
document, Environment Directorate, OECD, Paris.  
(2) Combes RD, Gaunt I, Balls M (2004). A Scientific and Animal Welfare 
Assessment of the OECD Health Effects Test Guidelines for the Safety Testing of Chemicals under the European Union REACH System. ATLA 
32: 163-208.
 
(3) Barlow SM, Greig JB, Bridges JW  et al.  (2002). Hazard identification by 
methods of animal-based toxicology. Food. Chem. Toxicol. 40, 145-191.  
(4) Chhabra RS, Bucher JR, Wolfe M, Portier C (2003). Toxicity characteri ­
zation of environmental chemicals by the US National Toxicology Programme: an overview. Int. J. Hyg. Environ. Health 206: 437-445.
 
(5) Глава  Б.27 от настоящото  приложение  („Изследване  на субхронична  
орална  токсичност  — 90-дневно  изследване  на токсичността  при не 
гризачи  с повтаряща  се доза“). 
(6) OECD (2012). Guidance Document on the Design and Conduct of Chronic 
Toxicity and Carcinogenicity Studies, Supporting Test Guidelines 451, 452 
and 453 - Second edition. Series on Testing and Assessment № 116, 
available on the OECD public website for Test Guideline at www.oecd.org/ env/testguidelines.
 
(7) OECD (2009). Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing, 
Series on Testing and Assessment № 39, ENV/JM/MONO(2009)28, 
OECD, Paris.  
(8) Глава  Б.8 от настоящото  приложение  („Субакутна  инхалаторна  токс­  
ичност : 28-дневно  изследване “). 
(9) Глава  Б.29 от настоящото  приложение  („Субхронична  инхалаторна  
токсичност : 90-дневно  изследване “). 
(10) Глава  Б.9 от настоящото  приложение  („Токсичност  (дермална ) с 
многократни  дози  (28 дни)“). 
(11) Carmichael NG, Barton HA, Boobis AR  et al.  (2006). Agricultural 
Chemical Safety Assessment: A Multisector Approach to the Moderni ­
zation of Human Safety Requirements. Critical Reviews in Toxicology 36: 1-7.
 
(12) Barton HA, Pastoor TP, Baetcke T  et al.  (2006). The Acquisition and 
Application of Absorption, Distribution, Metabolism, and 
Excretion (ADME) Data in Agricultural Chemical Safety Assessments. Critical Reviews in Toxicology 36: 9-35.
 
(13) Doe JE, Boobis AR, Blacker A  et al.  (2006). A Tiered Approach to 
Systemic Toxicity Testing for Agricultural Chemical Safety Assessment. 
Critical Reviews in Toxicology 36: 37-68.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 453
 
(14) Cooper RL, Lamb JS, Barlow SM  et al . (2006). A Tiered Approach to Life 
Stages Testing for Agricultural Chemical Safety Assessment. Critical 
Reviews in Toxicology 36: 69-98.  
(15) OECD (2002). Guidance Notes for Analysis and Evaluation of Chronic 
Toxicity and Carcinogenicity Studies, Series on Testing and Assessment 
№ 35 and Series on Pesticides № 14, ENV/JM/MONO(2002)19, OECD, 
Paris.  
(16) OECD (2000). Guidance Document on the recognition, assessment, and use 
of clinical signs as humane endpoints for experimental animals used in safety evaluation, № 19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, Paris.
 
(17) Rhomberg LR, Baetcke K, Blancato J, Bus J, Cohen S, Conolly R, Dixit R, 
Doe J, Ekelman K, Fenner-Crisp P, Harvey P, Hattis D, Jacobs A, Jacobson-Kram D, Lewandowski T, Liteplo R, Pelkonen O, Rice J, Somers D, Turturro A, West W, Olin S (2007). Issues in the Design and 
Interpretation of Chronic Toxicity and Carcinogenicity Studies in Rodents: 
Approaches to Dose Selection Crit Rev. Toxicol. 37 (9): 729 - 837.
 
(18) ILSI (International Life Sciences Institute) (1997). Principles for the 
Selection of Doses in Chronic Rodent Bioassays. Foran JA (Ed.). ILSI Press, Washington, DC.
 
(19) Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
22 септември  2010 година  относно  защитата  на животните , използвани  
за научни  цели  (ОВ L 276, 20.10.2010 г., стр. 33).  
(20) National Research Council, 1985. Guide for the care and use of laboratory 
animals. NIH Publication № 86-23. Washington D.C., US. Dept. of Health 
and Human Services.  
(21) GV-SOLAS (Society for Laboratory Animal Science, Gesellschaft für 
Versuchstierkunde, 1988). Publication on the Planning and Structure of Animal Facilities for Institutes Performing Animal Experiments. ISBN 3-906255-04-2.
 
(22) GV-SOLAS (Society for Laboratory Animal Science, Gesellschaft für 
Versuchstierkunde, 2006). Microbiological monitoring of laboratory 
animals in various housing systems.  
(23) Diehl K-H, Hull R, Morton D, Pfister R, Rabemampianina Y, Smith D, 
Vidal J-M, van de Vorstenbosch C. 2001. A good practice guide to the 
administration of substances and removal of blood, including routes and 
volumes. Journal of Applied Toxicology 21:15-23.  
(24) IPCS (1986). Principles and Methods for the Assessment of Neurotoxicity 
Associated with Exposure to Chemicals. Environmental Health Criteria 
Document № 60. 
(25) Tupper DE, Wallace RB (1980). Utility of the Neurologic Examination in 
Rats. Acta Neurobiol. Exp. 40: 999-1003.  
(26) Gad SC (1982). A Neuromuscular Screen for Use in Industrial Toxicology. 
J. Toxicol.Environ. Health 9: 691-704.  
(27) Moser VC, McDaniel KM, Phillips PM (1991). Rat Strain and Stock 
Comparisons Using a Functional Observational Battery: Baseline Values 
and Effects of Amitraz. Toxicol. Appl. Pharmacol. 108: 267-283.  
(28) Meyer OA, Tilson HA, Byrd WC, Riley MT (1979). A Method for the 
RoutineAssessment of Fore- and Hind-limb Grip Strength of Rats and 
Mice. Neurobehav. Toxicol. 1: 233-236.  
(29) Crofton KM, Howard JL, Moser VC, Gill MW, Reiter LW, Tilson HA, 
MacPhail RC (1991). Interlaboratory Comparison of Motor Activity Expe ­
riments: Implication for Neurotoxicological Assessments. Neurotoxicol. 
Teratol. 13: 599-609.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 454
 
(30) Weingand K, Brown G, Hall R  et al.  (1996). Harmonisation of Animal 
Clinical Pathology Testing in Toxicity and Safety Studies. Fundam. & 
Appl. Toxicol. 29: 198-201.  
(31) (Проект  на) документ  на Европейска  агенция  по лекарствата  „Нек­  
линични  насоки  относно  хепатотоксичността , индуцирана  от 
лекарствени  продукти “ (док. № EMEA/CHMP/SWP/a50115/2006).  
(32) Crissman JW, Goodman DG, Hildebrandt PK et al. (2004). Best Practices 
Guideline: Toxicological Histopathology. Toxicologic Pathology 32: 
126-131.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 455
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Изпитван  химикал : Всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 456
 
Б.31. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ОЦЕНКА  НА ТОКСИЧНОСТТА  ЗА 
ПРЕНАТАЛНОТО  РАЗВИТИЕ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на метод  ОИСР  ТG 414 (2001).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  за оценка  на токсичността  за развитието  е 
разработен  с цел да се проучат  ефектите  на пренаталната  
експозиция  върху  бременните  опитни  животни  и върху  
развиващите  се организми  in utero.  Това  включва  оценка  на 
ефектите  върху  майките , както  и на смъртността , структурните  
аномалии  и отклоненията  в растежа  на плода . Въпреки  че 
функционалните  нарушения  представляват  съществена  проява  
на токсичността  за развитието , тяхната  оценка  не е предмет  на 
настоящия  метод  за изпитване . Тя може  да се извърши  отделно  
или като допълнение  към това изпитване , като се приложи  
методът  за оценка  на невротоксичността  за развитието . За 
информация  във връзка  с изпитването  за функционални  
нарушения  и други  постнатални  ефекти  могат  да се ползват  
методите  за оценка  на репродуктивната  токсичност  в две 
поколения  и на невротоксичността  за развитието . 
В отделни  случаи  може  да се наложи  този метод  да се адаптира  
въз основа  на познанията  за специфичните  особености  на 
изпитваното  химично  вещество , например  за неговите  физикох­  
имични  или токсикологични  свойства . Внасянето  на изменения  
в метода  е допустимо , когато  съществуват  убедителни  научни  
данни  за това, че прилагането  на адаптирания  метод  ще доведе  
до по-информативни  резултати . Научните  данни  в подкрепа  на 
необходимостта  от адаптиране  на метода  трябва  внимателно  да 
се документират  в отчета  на проучването . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Токсикология  на развитието : дял от токсикологията , който  
изучава  неблагоприятните  ефекти  върху  развиващия  се 
организъм  в резултат  от експозиция  преди  зачеването , по 
време  на пренаталното  развитие  или постнатално  до настъ­  
пването  на полова  зрялост . Основните  прояви  на токсичността  
за развитието  включват : 1) смърт  на организма ; 2) структурни  
аномалии ; 3) промени  в растежа ; 4) функционални  нарушения . В 
миналото  вместо  „токсикология  на развитието “ често  се е 
използвало  названието  „тератология “. 
Неблагоприятен  ефект : всяка  промяна  спрямо  изходното  
състояние  на организма , свързана  с прилагането  на изпитваното  
вещество , която  води  до понижаване  жизнеспособността  на 
организма , способността  му да се размножава  или да се 
адаптира  към околната  среда . Неблагоприятните  ефекти  за 
развитието  в най-широк  смисъл  обхващат  всеки  ефект , който  
нарушава  нормалното  развитие  на организма  преди  или след  
раждането . 
Нарушение  на растежа : промени  в масата  или размерите  на 
тялото  или органите  на развиващия  се организъм . 
Изменения  (аномалии ): нарушения  в развитието  на анатом­  
ичната  структура , които  включват  малформации  и 
вариации  (28).  
Малформация /тежка  аномалия : структурна  промяна , която  
оказва  значителен  неблагоприятен  ефект  върху  състоянието  на 
животното  (може  да бъде  и летална ) и обикновено  настъпва  
рядко . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 457
 
Вариация /незначителна  аномалия : структурна  промяна , която  
оказва  незначителен  неблагоприятен  ефект  или не оказва  небл­  
агоприятен  ефект  върху  състоянието  на животното ; тя може  да 
бъде  преходна  и може  да се среща  сравнително  често  в 
контролната  популация . 
Заченат  организъм : термин , с който  се обозначава  развиващият  
се организъм  през всички  етапи  от развитието  на оплодената  
яйцеклетка  от оплождането  до раждането , включително  
ембрионалния  и феталния  период ; към него  се отнасят  и 
екстраембрионалните  структури . 
Имплантация  (нидация ): прикрепването  на бластоциста  към 
епителния  слой , покриващ  маточната  кухина , включително  
проникването  на бластоциста  през епитела  и навлизането  му в 
ендометриума . 
Ембрион : организмът  в ранния  стадий  на развитие  след  
оплождането , по-специално  времето  от появата  на дългата  ос 
до момента , в който  са налице  всички  основни  анатомични  
структури  (до края  на периода  на органогенезата ). 
Ембриотоксичност : токсичност , свързана  с нарушаване  на 
нормалната  анатомична  структура , развитието , растежа  и/или 
жизнеспособността  на ембриона . 
Фетус : организмът  в стадия  на развитие  между  края  на 
ембрионалния  период  и раждането . 
Фетотоксичност : токсичност , свързана  с нарушаване  на 
нормалната  анатомична  структура , развитието , растежа  и/или 
жизнеспособността  на фетуса . 
Аборт : преждевременното  изхвърляне  на ембриона  или 
нежизнеспособния  фетус  от матката . 
Резорбция : състояние , при което  имплантираният  в матката  
плод  е загинал  и в момента  на наблюдението  е в процес  на 
резорбция  или вече се е резорбирал . 
Ранна  резорбция : състояние , при което  се наблюдават  
признаци  на имплантация , без да се открива  ембрион /фетус . 
Късна  резорбция : състояние , при което  ембрионът  или фетусът  
е загинал  и при огледа  му се наблюдават  външни  дегенеративни  
промени . 
NOAEL:  съкращение  на термина  „no-observed-adverse-effect 
level“ (ниво , при което  не се наблюдава  неблагоприятен  
ефект ); означава  най-високата  доза/ниво  на експозиция , при 
които  не се наблюдават  неблагоприятни  ефекти  вследствие  
третирането  на организма  с дадено  химично  вещество . 
1.3. РЕФЕРЕНТНО  ВЕЩЕСТВО  
Не се използва . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Обикновено  бременните  животни  се третират  с изпитваното  
вещество  най-късно  от момента  на имплантацията  до деня  преди  
датата , за която  е планирано  убиването  им. Тази  дата следва  да се 
избере  така, че да бъде  колкото  е възможно  по-близо  до датата  на 
термина , като в същото  време  се избегне  рискът  от загуба  на данни  
в резултат  от настъпване  на преждевременно  раждане . Методът  не е 
предназначен  за изследване  само  на периода  на органогенезата  (ден 
5—15 при гризачи  и ден 6—18 при зайци ). Проследяват  се ефектите  
през цялата  бременност  до деня  преди  извършването  на цезарово  
сечение . Когато  е възможно , се обхваща  и предимплантационният  
период . Непосредствено  преди  извършването  на цезарово  сечение  
женските  животни  се убиват , съдържанието  на матката  се 
преглежда  и фетусите  се изследват  за наличие  на видими  външни  
аномалии  и аномалии  на меките  тъкани  и скелета . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 458
 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.5.1.  Избор  на вида  опитни  животни  
Препоръчва  се изпитването  да се извърши  върху  най-подходящия  
вид животни  и да се изберат  видове  и породи  лабораторни  
животни , които  обичайно  се използват  при изпитвания  за 
оценка  на пренаталната  токсичност  за развитието . Предпоч­  
итаният  вид гризачи  е плъх , а предпочитаният  вид опитни  
животни , който  не се отнася  към гризачите , е заек. Използването  
на други  животински  видове  следва  да се обоснове . 
1.5.2.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Температурата  на помещението , в което  се извършва  
изпитването , следва  да бъде  22  o С (± 3  o ) за гризачите  и 18  o С 
(± 3  o ) за зайците . Стойностите  на относителната  влажност  не 
следва  да бъдат  по-ниски  от 30 % и е желателно  да не 
превишават  70 %, освен  при почистване  на помещението . 
Целта  следва  да бъде  относителната  влажност  да се поддържа  
в интервала  50—60 %. Осветлението  следва  да бъде  изкуствено , 
като се редуват  12 часа светлина  и 12 часа тъмнина . При 
храненето  се използват  обичайните  лабораторни  диети  с 
неограничен  достъп  до питейна  вода . 
Чифтосването  следва  да се извърши  в клетки , подходящи  за 
целта . За предпочитане  е чифтосаните  животни  да се поставят  
в индивидуални  клетки , но се допуска  да се разпределят  на 
малки  групи  в общи  клетки . 
1.5.3.  Подготовка  на опитните  животни  
Следва  да се използват  здрави  животни , които  предварително  са се 
аклиматизирали  към лабораторните  условия  в продължение  най- 
малко  на 5 дни и не са подлагани  на други  изпитвания . Опитните  
животни  следва  да се опишат  по отношение  на вид, порода , 
източник  за доставка , пол, телесна  маса  и/или възраст . Стой­  
ностите  на телесната  маса  и възрастта  на животните  във всички  
опитни  групи  следва  да бъдат  възможно  най-близки . Във всяка  
опитна  група  следва  да се включат  млади , полово  зрели , 
нераждали  женски  животни . Женските  животни  следва  да се 
чифтосат  с мъжки  животни  от същия  вид и порода , като се 
избягва  чифтосването  между  животни  от едно  и също  котило . 
При гризачите  за ден 0 на гестацията  се приема  денят , в който  
се наблюдава  вагинална  запушалка  и/или сперматозоиди ; при 
зайците  за ден 0 се счита  най-често  денят  на коитуса  или 
изкуственото  осеменяване  в случаите , когато  се прилага  тази 
техника . Чифтосаните  женски  животни  следва  да бъдат  
разпределени  на принципа  на случайния  подбор  към 
експонираните  групи  и контролната  група . Клетките  следва  да 
бъдат  подредени  по такъв  начин , че да се намалят  до минимум  
възможните  ефекти  в резултат  от разположението  им. Всяко  
животно  следва  да получи  индивидуален  идентификационен  
номер . Чифтосаните  женски  животни  следва  да бъдат  
разпределени  чрез случаен  подбор  към контролната  и опитните  
групи . Когато  женските  са чифтосани  последователно  по групи , 
животните  от всяка  група  следва  да се разпределят  равномерно  
между  отделните  експонирани  групи  и контролната  група . Също  
така женските , осеменени  от едно  и също  мъжко  животно , следва  
да се разпределят  равномерно  в отделните  групи . 
1.6. ПРОЦЕДУРА  
1.6.1.  Брой  и пол на животните  
Експонираните  групи  и контролната  група  следва  да обхващат  
достатъчен  брой  женски  животни , така че при аутопсията  всяка  
група  да включва  приблизително  20 женски  животни  с места  на 
имплантация . По правило  групите  не би следвало  да наброяват  
по-малко  от 16 животни  с места  на имплантация . При появата  на 
смътни  случаи  сред  майките  проучването  се приема  за валидно , 
когато  смъртността  не превишава  приблизителната  граница  от 10 %.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 459
 
1.6.2.  Подготовка  на дозите  
Когато  за улесняване  на въвеждането  се използва  носител  или друга  
добавка  към изпитваното  вещество , следва  да се вземат  предвид  
следните  възможни  ефекти  на носителя /добавката : ефекти  върху  
резорбцията , разпределението , метаболизма  и ретенцията  или 
екскрецията  на изпитваното  вещество ; ефекти  върху  химичните  
свойства  на веществото , които  могат  да повлияят  върху  токсиколог­  
ичните  му свойства ; ефекти  върху  консумацията  на храна  и вода  
или върху  хранителния  статус  на животните . Веществото  носител  
не следва  да предизвиква  токсични  ефекти  върху  развиващия  се 
организъм  или възпроизводителната  функция . 
1.6.3.  Дози  
Най-често  изпитваното  вещество  се въвежда  всеки  ден от момента  
на имплантацията  (напр . от ден 5 след  чифтосването ) до деня  
преди  датата , за която  е определено  извършването  на цезарово  
сечение . Когато  предварителните  проучвания , ако такива  са 
налице , показват , че вероятността  от настъпване  на предимплант­  
ационна  смърт  не е висока , периодът  на третиране  може  да се 
разшири  и да обхване  целия  гестационен  период  от момента  на 
чифтосването  до деня  преди  датата , за която  е определено  
убиването . Известно  е, че неправилното  отглеждане  и провеждане  
на манипулациите , както  и стресът  по време  на бременността  
могат  да доведат  до преждевременна  загуба  на плода . За да се 
предотврати  загубата  на плода  в резултат  от фактори , които  не 
са свързани  с експозицията  на изпитваното  вещество , следва  да 
се избягват  ненужни  манипулации  върху  бременните  животни , 
както  и стресът  от външни  фактори , например  шум . 
Следва  да се приложат  най-малко  три дози . Успоредно  с 
експонираните  групи  се наблюдава  и нетретирана  контролна  
група . Опитните  животни  следва  да са здрави . Те се разпределят  
между  отделните  експонирани  групи  и контролната  група  чрез 
случаен  подбор . Дозите  следва  да бъдат  избрани  в такова  съот­  
ношение , че с нарастването  им да се наблюдава  ясно  изразено  
засилване  на токсичните  ефекти . С изключение  на случаите , 
когато  се налагат  ограничения  във връзка  с физични , химични  
или биологични  свойства  на изпитваното  вещество , най-високата  
доза следва  да бъде  подбрана  така, че да води  до прояви  на токс­  
ичност  за майката  и/или за развиващия  се организъм  (клинични  
симптоми  или понижение  на телесната  маса ), но не и до смърт  
или тежко  страдание . Най-малко  една  междинна  доза следва  да 
предизвиква  минимални  наблюдавани  токсични  ефекти . Най- 
ниската  доза не следва  да предизвиква  никакви  прояви  на токс­  
ичност  за майката  или развиващия  се организъм . Дозите  следва  
да се подберат  в намаляваща  последователност  по такъв  начин , че 
да се характеризира  зависимостта  „доза-отговор “ и да се установи  
нивото , при което  не се наблюдава  неблагоприятен  ефект  (NOAEL). 
В повечето  случаи  най-подходящо  е да се използва  двукратно  до 
четирикратно  намаление  на всяка  доза спрямо  най-близката  по- 
висока  доза. Включването  на допълнителна  четвърта  експонирана  
група  често  е за предпочитане  пред  използването  на твърде  големи  
интервали  между  дозите  (напр . намаление  повече  от 10 пъти ). 
Въпреки  че целта  на изпитването  е определяне  на NOAEL за 
майката , се допускат  и случаи , когато  това ниво  не може  да се 
установи  (1). 
Нивата  на дозите  следва  да се подберат , като се вземат  под 
внимание  всички  съществуващи  токсикологични  данни , както  и 
информацията  за метаболизма  и токсикокинетиката  на изпитваното  
вещество  или на подобни  вещества . Тази  информация  се използва  
също  и при обосновката  на схемата  на третиране . 
Заедно  с експонираните  групи  следва  да се използва  и контролна  
група . На животните  от тази група  се въвежда  вода  или носител , 
когато  се използва  такъв . Изпитваното  вещество  или носителят  се 
въвеждат  в един  и същи  обем  при всички  групи . Животните  в 
контролната  група /групи  следва  да се поставят  при същите  
условия  и да се подлагат  на същите  манипулации  както  тези от 
експонираните  групи . Носителят  следва  да се въвежда  на 
животните  от контролната  група  в най-голямото  количество , 
което  се въвежда  на експонираните  животни  (количеството , с 
което  се въвежда  най-ниската  доза от изпитваното  вещество ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 460
 
1.6.4.  Лимитиращо  изпитване  
Когато  изпитването  върху  една  експонирана  група  с орална  дневна  
доза, равна  или по-висока  от 1 000 mg/kg т.м., извършено  съгласно  
процедурите , описани  в настоящия  метод , не предизвика  набл­  
юдавани  признаци  на токсичност  както  при бременните  животни , 
така и при тяхното  поколение , или когато  при тази или по-високи  
дози  не се очаква  поява  на токсичен  ефект  въз основа  на 
съществуващи  данни  (напр . за структурни  аналози  или за 
вещества  с подобен  метаболизъм ), тогава  извършването  на 
изпитването  в пълен  обем  с три различни  дози  може  да се 
прецени  като ненужно . Във връзка  с очакваните  нива  на експозиция  
за населението  може  да се наложи  необходимостта  от използване  на 
по-високи  орални  дози  в лимитиращото  изпитване . При други  
пътища  на въвеждане , напр . инхалаторно  или дермално , физикох­  
имичните  свойства  на изпитваното  вещество  често  могат  да 
повлияят  и да ограничат  максимално  възможното  ниво  на 
експозиция  (например  дермалната  апликация  не следва  да 
предизвиква  силно  изразена  локална  токсичност ). 
1.6.5.  Въвеждане  на дозите  
Изпитваното  вещество  или носителят  обикновено  се въвеждат  
орално  чрез гаваж . Когато  се използва  друг  път на въвеждане , 
изборът  следва  да се обоснове . В този случай  може  да се наложи  
въвеждането  на модификации  в представения  метод  (2)(3)(4). 
Изпитваното  вещество  следва  да се въвежда  приблизително  по 
едно  и също  време  всеки  ден. 
Количеството  от веществото , което  се въвежда  на всяко  животно , се 
изчислява  спрямо  последното  измерване  на телесната  маса . 
Въпреки  това, когато  третирането  се извършва  през последната  
третина  на бременността , следва  да се подхожда  предпазливо  при 
изчисляване  на количеството . За да се избегне  силно  изразен  
токсичен  ефект  върху  майките , при избора  на дозите  следва  да се 
използват  съществуващите  данни  за веществото . Когато  при 
бременните  животни  се наблюдават  симптоми  на тежка  интокс­  
икация , те следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  начин . Ако 
няколко  бременни  животни  показват  симптоми  на тежка  интокс­  
икация , следва  да се прецени  дали  е необходимо  всички  животни  от 
тази опитна  група  да бъдат  умъртвени  по хуманен  начин . Когато  
веществото  се въвежда  чрез гаваж , се препоръчва  въвеждането  да се 
извършва  веднъж  дневно  посредством  стомашна  сонда  или 
подходяща  интубационна  канюла . Максималният  обем  течност , 
който  може  да бъде  въведен  еднократно , зависи  от телесната  маса  
на опитното  животно . Обемът  не следва  да превишава  1 ml/100 g 
т.м., освен  в случаите , когато  се прилагат  водни  разтвори . Тогава  
обемът  може  да достигне  2 ml/100 g т.м. Когато  се използва  
царевично  олио  като носител , обемът  не следва  да превишава  0,4 
ml/100 g т.м. За да се осигури  въвеждането  на веществото  в 
постоянен  обем  при всички  използвани  дози , промените  в обема  
следва  да бъдат  сведени  до минимум , като вместо  него се променят  
концентрациите . 
1.6.6.  Наблюдения  върху  бременните  животни  
Клиничните  наблюдения  следва  да се извършват  и да се отразяват  
в документацията  на изпитването  най-малко  един  път дневно , за 
предпочитане  всеки  ден по едно  и също  време , като се вземе  под 
внимание  периодът  след  третирането , когато  се очаква  появата  на 
най-силно  изразени  ефекти . Състоянието  на животните  следва  да 
се описва , като се отразяват  смъртността , наличието  на животни  в 
терминално  състояние , промените  в поведението  и всички  прояви  
на ясно  изразено  токсично  действие . 
1.6.7.  Телесна  маса  и консумация  на храна  
Животните  следва  да се претеглят  в ден 0 от гестационния  период  
(в случаите  когато  осеменените  животни  са доставени  от външен  
снабдител  — не по-късно  от ден 3 от гестацията ), както  и в деня , 
когато  започва  третирането , най-малко  на всеки  3 дни по време  на 
експозицията  и в деня , за който  е насрочено  убиването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 461
 
Количеството  на консумираната  храна  следва  да се отчита  и 
записва  на всеки  три дни, в същите  дни, когато  се измерва  
телесната  маса . 
1.6.8.  Макроскопски  оглед  при аутопсиране  
Женските  животни  следва  да се убият  един  ден преди  
очакваната  дата на раждането . Женските  животни , показващи  
признаци  на аборт  или преждевременно  раждане  преди  деня , 
за който  е насрочено  убиването , следва  да бъдат  убити  и 
подложени  на цялостен  макроскопски  оглед . 
В момента  на убиването  или при настъпването  на смърт  по 
време  на изпитването  следва  да се извърши  макроскопски  
оглед  на женските  животни , за да се установи  наличието  на 
структурни  аномалии  или други  патологични  промени . 
Препоръчва  се огледът  на бременните  животни  по време  на 
цезаровото  сечение  и огледът  на фетусите  да се извършат , без 
да се знае към коя група  се отнасят  майките  и фетусите , за да не 
се отрази  това върху  наблюденията  и оценките . 
1.6.9.  Оглед  на съдържанието  на матката  
Веднага  след  убиването  или възможно  най-скоро  след  
настъпване  на смъртта  матките  следва  да бъдат  извадени  и да 
се потвърди  наличието  на бременност . Когато  видът  на матката  
показва  отсъствие  на бременност , тя следва  да се изследва  по- 
подробно  (напр . чрез оцветяване  с амониев  сулфид  при гризачи  
и оцветяване  по Salewski или друг  подходящ  метод  при зайци ), 
за да се потвърди , че животното  не е бременно  (5). 
Матките  на бременните  животни , включително  цервиксът , 
следва  да бъдат  претеглени . Не е необходимо  да се измерва  
масата  на матките  на бременни  животни , умрели  по време  на 
проучването . 
За всяко  бременно  животно  следва  да се определи  броят  на 
жълтите  тела. 
Съдържанието  на матката  следва  да се прегледа , за да се 
установи  броят  на мъртвите  ембриони /фетуси  и на живите  
фетуси . Следва  да се опише  степента  на резорбция , за да се 
установи  приблизителното  време  на смъртта  на умрелите  
ембриони /фетуси  (вж. точка  1.2).  
1.6.10.  Оглед  на фетусите  
При огледа  на всеки  фетус  следва  да се определи  полът  и да се 
измери  телесната  маса . 
Всеки  фетус  следва  да се прегледа  за наличие  на външни  
аномалии  (6). 
Фетусите  следва  да се огледат  за наличие  на изменения  в 
скелета  и меките  тъкани  (напр . вариации  и малформации  или 
аномалии ) (7) (8) (9) (10) (11) (12) (13) (14) (15) (16) (17) (18) 
(19) (20) (21) (22) (23) (24). Препоръчва  се да се извърши  
категоризиране  на наблюдаваните  изменения , но това не се 
изисква  задължително . Когато  се извършва  категоризиране , 
следва  ясно  да се посочат  критериите , отнасящи  се за всяка  
категория . Особено  внимание  при огледа  следва  да се обърне  
на състоянието  на половата  система  и да се търсят  признаци  за 
нарушение  в развитието  ѝ. 
Когато  изпитването  се извършва  върху  гризачи , приблизително  
половината  от фетусите  във всяко  котило  следва  да бъдат  
обработени  и изследвани  за наличие  на скелетни  аномалии . 
Останалите  фетуси  следва  да се обработят  и изследват  за 
наличие  на изменения  в меките  тъкани  посредством  утвърдени  
или подходящи  методи  за серийно  сециране  или прецизни  
секционни  техники  за макроскопски  оглед . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 462
 
Когато  изпитването  се извършва  върху  животни , които  не са 
гризачи , например  върху  зайци , всички  фетуси  следва  да се 
прегледат  за наличие  на изменения  както  в меките  тъкани , 
така и в скелета . Огледът  на тези фетуси  се извършва  чрез 
внимателна  дисекция , при която  се търсят  изменения  в меките  
тъкани . Дисекцията  може  да включва  и процедури , чрез които  
се изследва  по-подробно  устройството  на сърцето  (25). При 
огледа  главите  на половината  от фетусите  следва  да се 
отделят , обработят  и изследват  за наличие  на изменения  в 
меките  тъкани  (включително  очи, мозък , носни  кухини  и език) 
посредством  стандартни  методи  за серийно  сециране  (26) или 
други  методи  с подобна  чувствителност . Телата  на всички  
фетуси  следва  да се обработят  и огледат  за наличие  на 
скелетни  аномалии  посредством  същите  методи  както  тези, 
които  се прилагат  при гризачите . 
2. ДАННИ  
2.1. ПРЕДСТАВЯНЕ  И ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Данните  следва  да се представят  индивидуално  както  за 
бременните  животни , така и за тяхното  поколение , и да се 
обобщят  в табличен  вид, като за всяка  опитна  група  и за 
всяко  поколение  се посочат  броят  на животните  в началото  на 
изпитването , броят  на животните , умрели  по време  на 
изпитването  или умъртвени  по хуманни  съображения , и 
времето  на настъпване  на смъртта  или на умъртвяването , 
броят  на бременните  женски  животни , броят  на животните  със 
симптоми  на токсично  действие , характеристиката  на наблюда­  
ваните  симптоми , включително  време  на поява , продължит­  
елност  и степен  на изразеност , наблюдения  върху  ембрионите  
и фетусите , както  и всички  необходими  данни  за котилата . 
Количествените  резултати  следва  да се оценят  чрез подходящи  
статистически  методи , като котилото  се използва  като единица  
за наблюдение  при анализа  на данните . Следва  да се приложат  
общоприети  статистически  методи . Подборът  на статист­  
ическите  методи  следва  да се направи  в зависимост  от дизайна  
на проучването  и да се обоснове . Данните  за животни , които  не 
са преживели  до датата  на убиването , също  следва  да се 
представят  в отчета  за изпитването . Тези  данни  могат  да се 
включат  при изчислението  на средногруповите  стойности  на 
изследваните  показатели , когато  това е възможно . Информатив­  
ността  на данните  за тези животни  и съответно  включването  или 
изключването  им при изчислението  на средногрупови  стойности  
следва  да се прецени  за всеки  отделен  случай  и да се обоснове . 
2.2. ОЦЕНКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Оценката  на резултатите  от проучването  на пренаталната  токс­  
ичност  за развитието  се извършва  въз основа  на наблюдаваните  
ефекти . Оценката  включва  следните  данни : 
— резултати  от изпитването  по отношение  на майките  и 
ембрионите /фетусите , включително  оценка  на зависимостта  
(или отсъствието  на такава ) между  експозицията  на 
изпитваното  вещество  и честотата  и тежестта  на всяка  от 
наблюдаваните  промени ; 
— критерии  за категоризиране  на измененията  във външния  
вид, скелета  и меките  тъкани  на фетусит , в случаите , 
когато  е извършено  категоризиране ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 463
 
— когато  е необходимо , следва  да се представят  данни  за 
контролни  групи  от предишни  изпитвания  (историческа  
контрола ), за да се подпомогне  интерпретацията  на резултатите  
от настоящото  изпитване ; 
— стойностите , използвани  при изчислението  на индекси  или 
на относителни  дялове  (в проценти ); 
— адекватен  статистически  анализ  на резултатите  от 
изпитването , където  това е необходимо ; следва  да се даде  
достатъчно  информация  за използваните  методи , така че 
анализът  да може  да се възпроизведе  и оцени  от независим  
рецензент /статистик . 
Във всяко  проучване , при което  се установява  отсъствие  на 
каквито  и да е токсични  ефекти , е необходимо  да се прецени  
необходимостта  от допълнителни  изследвания  за определяне  
степента  на резорбция  и съдържанието  на изпитваното  
вещество  в организма  на третираните  животни . 
2.3. ИНТЕРПРЕТАЦИЯ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Изпитването  за оценка  на пренаталната  токсичност  за развитието  
следва  да даде информация  за ефектите  върху  бременните  животни  
и върху  вътреутробното  развитие  на тяхното  потомство  при 
многократно  постъпване  на дадено  химично  вещество  по време  
на бременността . Резултатите  от него следва  да се интерпретират  
във връзка  с данните  от изпитванията  за оценка  на субхроничната  
токсичност , репродуктивната  токсичност , токсикокинетиката  и др. 
Тъй като при изпитването  се оценява  както  системната  токсичност  
за майката , така и токсичността  за развиващия  се организъм , 
резултатите  позволяват  до известна  степен  да се разграничат  
ефектите  върху  развиващия  се организъм , които  се явяват  при 
отсъствие  на прояви  на системна  токсичност , от ефектите , които  
се предизвикват  само  при нива , токсични  и за майката  (27).  
3. ДОКЛАДВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ОТЧЕТ  ЗА ИЗПИТВАНЕТО  
Отчетът  за изпитването  следва  да включва  следната  
информация : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  и, където  е необходимо , физикохимични  
свойства ; 
— данни  за идентифициране  на химичното  вещество , включ­  
ително  CAS номер , ако такъв  е известен /определен ; 
— степен  на чистота  на веществото . 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— обосновка  за използването  на носител , когато  носителят  не е 
вода . 
Опитни  животни : 
— вид и порода  на използваните  опитните  животни ; 
— брой  и възраст  на опитните  животни ; 
— източник  за доставка  на животните , условия  на отглеждане , 
диета  и т.н.; 
— телесна  маса  на всяко  животно  в началото  на изпитването . 
Условия  на провеждане  на изпитването : 
— обосновка  за избора  на дозите ; 
— описание  на подготовката  на изпитваното  вещество  за 
въвеждане  (приготвяне  на формулация  или включване  в 
диетата ), използвани  концентрации , стабилност  и 
хомогенност  на формулацията ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 464
 
— описание  на въвеждането  на изпитваното  вещество ; 
— преизчисляване  на концентрациите  на изпитваното  вещество  
в диетата /питейната  вода  (ррт) в дневни  дози  (mg/kg т.м.), 
където  това е приложимо ; 
— условия  на средата , в която  се провежда  изпитването ; 
— критерии  за качество , на които  отговарят  храната  и водата  за 
пиене . 
Резултати : 
Данни  за отговора  във връзка  с токсичността  за майката  в 
зависимост  от приложената  доза — данните  включват , но не 
се ограничават  само  до: 
— брой  на животните  в началото  на изпитването , брой  на 
животните , преживели  до края  на изпитването , брой  на 
бременните  животни , брой  на животните  с аборт  и 
преждевременно  раждане ; 
— за всяко  животно  се отбелязва  дали  е преживяло  до деня  на 
убиването ; за тези, които  не са преживели , се отбелязва  
денят  на смъртта ; 
— данните  за животните , които  не са преживели  до деня  на 
планираното  убиване , следва  да се представят , но не следва  
да се използват  при статистическия  анализ  за сравнение  
между  групите ; 
— дата на появата  на всеки  клиничен  симптом ; проследяване  на 
по-нататъшното  му развитие ; 
— телесна  маса , прираст  на телесната  маса  и маса  на 
бременната  матка , включително , по желание , коригиране  на 
прираста  на телесната  маса  спрямо  масата  на бременната  
матка ; 
— данни  за консумацията  на храна ; представят  се и данните  за 
консумацията  на вода , ако тя е измерена ; 
— данни  от аутопсията , включително  маса  на матката ; 
— следва  да се посочат  стойностите  на NOAEL за ефектите  
върху  майката  и развиващия  се организъм . 
Ефекти  върху  развиващия  се организъм  при всяка  доза за 
котилата , при които  се установява  наличие  на имплантации , 
включително : 
— брой  на жълтите  тела; 
— брой  на имплантациите , брой  и относителен  дял (като %) на 
живите  и мъртвите  фетуси  и на резорбциите ; 
— брой  и относителен  дял на пред - и постимплантационните  
загуби . 
Ефекти  върху  развиващия  се организъм  при всяка  доза за 
котилата  с живи  фетуси , включително : 
— брой  и относителен  дял на живите  новородени ; 
— съотношение  между  броя  на фетусите  от всеки  пол; 
— фетална  телесна  маса , за предпочитане  както  поотделно  за 
всеки  пол, така и общо  за двата  пола ; 
— малформации , засягащи  външния  вид, скелета  и меките  
тъкани , и други  изменения ; 
— критерии  за категоризиране , когато  това е необходимо ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 465
 
— общ брой  и относителен  дял на фетусите  и котилата  с 
видими  външни  аномалии  и аномалии  на скелета  и меките  
тъкани ; характеристика  на наблюдаваните  аномалии  и други  
изменения  по вид и честота . 
Обсъждане  на резултатите . 
Изводи . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Kavlock R. J. et al. (1996) A Simulation Study of the 
Influence of Study Design on the Estimation of Benchmark 
Doses for Developmental Toxicity.  Risk Analysis  16; 
399—410.  
(2) Kimmel, C. A. and Francis, E.Z. (1990) Proceedings of the 
Workshop on the Acceptability and Interpretation of Dermal Developmental Toxicity Studies.  Fundamental and Applied 
Toxicology  14; 386—398.
 
(3) Wong, B. A., et al. (1997) Developing Specialized Inhalation 
Exposure Systems to Address Toxicological Problems.  CUT 
Activities  17; 1—8.  
(4) US Environmental Protection Agency (1985) Subpart E- 
Specific Organ/Tissue Toxicity, 40 CFR 798.4350: Inhalation Developmental Toxicity Study.
 
(5) Salewski, E. (1964) Faerbermethode zum Makroskopischen 
Nachweis von Implantations Stellen am Uterusder Ratte.  
Naunyn.Schmeidebergs Archiv fur Pharmakologie und Experi ­
mentelle Pathologie  247:367.  
(6) Edwards, J. A. (1968) The external Development of the Rabbit 
and Rat Embryo. In  Advances in Teratology.  D. H. M. 
Woolam (ed.) Vol. 3. Academic Press, NY.  
(7) Inouye, M. (1976) Differential Staining of Cartilage and Bone 
in Fetal Mouse Skeleton by Alcian Blue and Alizarin Red S.  
Congenital Anomalies  16; 171—173.  
(8) Igarashi, E. et al. (1992) Frequency Of Spontaneous Axial 
Skeletal Variations Detected by the Double Staining Techni ­
quefor Ossified and Cartilaginous Skeleton in Rat Foetuses.  
Congenital Anomalies  32; 381—391.  
(9) Kimmel, C.A. et al. (1993) Skeletal Development Following 
Heat Exposure in the Rat.  Teratology  47: 229—242.  
(10) Marr, M.C. et al. (1988) Comparison of Single and Double 
Staining for Evaluation of Skeletal Development: The Effects of Ethylene Glycol (EG) in CD Rats.  Teratology  37; 476.
 
(11) Barrow, M.V. and Taylor, W.J. (1969) A Rapid Method for 
Detecting Malformations in Rat Foetuses.  Journal of 
Morphology  127:291—306.  
(12) Fritz, H. (1974) Prenatal Ossification in Rabbits ss Indicative 
of Foetal Maturity.  Teratology  11; 313—320.  
(13) Gibson, J.P. et al. (1966) Use of the Rabbit in Teratogenicity 
Studies.  Toxicology and Applied Pharmacology  9; 398—408.  
(14) Kimmel, C.A. and Wilson, J.G. (1973) Skeletal Deviation in 
Rats: Malformations or Variations?  Teratology  8; 309—316.  
(15) Marr, M.C. et al. (1992) Developmental Stages of the CD 
(Sprague-Dawley) Rat Skeleton after Maternal Exposure to 
Ethylene Glycol.  Teratology  46; 169—181.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 466
 
(16) Monie, I.W. et al. (1965) Dissection Procedures for Rat 
Foetuses Permitting Alizarin Red Staining of Skeleton and 
Histological Study of Viscera.  Supplement to Teratology 
Workshop Manual, pp.  163—173.  
(17) Spark, C. and Dawson, A.B. (1928) The Order and Time of 
appearance of Centers of Ossification in the Fore and Hind 
Limbs of the Albino Rat, with Special Reference to the Possible Influence of the Sex Factor.  American Journal of 
Anatomy  41; 411—445.
 
(18) Staples, R.E. and Schnell, V.L. (1964) Refinements in Rapid 
Clearing Technique in the KOH-Alizarin Red S Method for Fetal Bone.  Stain Technology  39; 61—63.
 
(19) Strong, R.M. (1928) The Order Time and Rate of Ossification 
of the Albino Rat (Mus Norvegicus Albinus) 
Skeleton.  American Journal of Anatomy  36; 313—355.  
(20) Stuckhardt, J.L. and Poppe, S.M. (1984) Fresh Visceral Exami ­
nation of Rat and Rabbit Foetuses Used in Teratogenicity 
Testing.  Teratogenesis, Carcinogenesis, and Mutagenesis  4; 
181—188.  
(21) Walker, D.G. and Wirtschafter, Z.T. (1957)  The Genesis of the 
Rat Skeleton.  Thomas, Springfield, IL.  
(22) Wilson, J.G. (1965) Embryological Considerations in Tera ­
tology. In  Teratology: Principles and Techniques,  Wilson 
J.G. and Warkany J. (eds). University of Chicago, Chicago, 
IL, pp 251—277.  
(23) Wilson, J.G. and Fraser, F.C. (eds). (1977)  Handbook of 
Teratology,  Vol. 4. Plenum, NY.  
(24) Varnagy, L. (1980) Use of Recent Fetal Bone Staining Tech ­
niques in the Evaluation of Pesticide Teratogenicity.  Acta Vet. 
Acad. Sci. Hung.  28; 233—239.  
(25) Staples, R.E. (1974) Detection of visceral Alterations in 
Mammalian Foetuses.  Teratology  9; 37—38.  
(26) Van Julsingha, E.B. and C.G. Bennett (1977) A Dissecting 
Procedure for the Detection of Anomalies in the Rabbit Foetal Head. In:  Methods in Prenatal Toxicology  Neubert, 
D., Merker, H.J. and Kwasigroch, T.E. (eds.). University of 
Chicago, Chicago, IL, pp. 126—144.
 
(27) US Environmental Protection Agency (1991) Guidelines for 
Developmental Toxicity Risk Assessment.  Federal Register  
56; 63798—63826.  
(28) Wise, D.L. et al. (1997) Terminology of Developmental 
Abnormalities in Common Laboratory Mammals (Version 1) Teratology 55; 249—292.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 467
 
Б.32. ИЗСЛЕДВАНИЯ  ЗА КАНЦЕРОГЕННОСТ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
451 на ОИСР  (ОИСР  TG 451) (2009 г.). Първоначалното  Указание  за 
изпитване  451 е прието  през 1981 г. Разработването  на този преработен  
метод  Б.32 беше  счетено  за необходимо , за да бъдат  отразени  
последните  достижения  в областта  на хуманното  отношение  към 
животните  и нормативните  изисквания  (2) (3) (4) (5) (6). Акту­  
ализирането  на настоящия  метод  за изпитване  Б.32 е проведено  
успоредно  с преразглеждането  на глава  Б.30 („Изследване  за 
хронична  токсичност “) и глава  Б.33 от настоящото  приложение  
(„Комбинирани  изследвания  за хронична  токсичност /канцерогенност “) 
от настоящото  приложение , и с цел получаване  на допълнителна  
информация  от животните , използвани  в изследването , и предоставяне  
на допълнителна  подробна  информация  относно  избора  на доза. 
Настоящият  метод  за изпитване  Б.32 е разработен  за използване  при 
изпитвания  на широк  кръг  от химикали , включително  пестициди  и 
промишлени  химикали . Следва  да се отбележи  обаче , че някои  
подробности  и изисквания  могат  да се различават  по отношение  на 
лекарствените  средства  (вж. Насока  S1B на Международната  
конференция  по хармонизация  (ICH) относно  изпитване  за 
канцерогенност  на фармацевтични  продукти ). 
2. По-голямата  част от изследванията  за канцерогенност  се извършват  
върху  различни  видове  гризачи  и следователно  настоящият  метод  за 
изпитване  е предназначен  да се прилага  основно  за изследвания , 
провеждани  върху  тези видове . Ако за такива  изследвания  се изисква  
използване  на видове , различни  от гризачи , следва  да се прилагат , с 
подходящи  изменения , принципите  и процедурите , описани  в 
настоящия  метод  за изпитване , заедно  с тези, разгледани  в глава  Б.27 
от настоящото  приложение  („Изследване  на субхронична  орална  токс­  
ичност  — 90-дневно  изследване  на токсичността  при не гризачи  с 
повтаряща  се доза“) (6). Допълнителни  насоки  са налични  в Ръко­  
водство  на ОИСР  № 116 за планиране  и провеждане  на изследвания  
за хронична  токсичност  и за канцерогенност  (7). 
3. Трите  основни  пътя  на прилагане , използвани  при изследванията  за 
канцерогенност , са орален , дермален  и инхалационен . Изборът  на път 
на прилагане  зависи  от физичните  и химичните  характеристики  на 
изпитвания  химикал  и от преобладаващия  път на експозиция  при 
хора . Допълнителна  информация  за избора  на път на експозиция  е 
представена  в Ръководство  № 116 (7).  
4. Настоящият  метод  за изпитване  е съсредоточен  върху  експозицията  по 
орален  път — най-често  използваният  път в изследванията  за 
канцерогенност . Макар  че изследванията  за канцерогенност , 
включващи  експозиция  по дермален  или инхалационен  път, могат  
също  да бъдат  необходими  за оценка  на риска  за човешкото  здраве  
и/или могат  да бъдат  изисквани  по силата  на някои  нормативни  
уредби , посочените  два пътя  на експозиция  са със значителна  техн­  
ическа  сложност . Такива  изследвания  трябва  да се планират  за всеки  
конкретен  случай , въпреки  че методът  за изпитване  за оценка  на 
канцерогенността  чрез прилагане  по орален  път би могъл  да послужи  
за основа  на протокол  за изследвания , включващи  инхалационен  и/или 
дермален  път, по отношение  на препоръките  за периодите  за третиране , 
клиничните  параметри  и параметрите  на патологията , и други . Налични  
са указания  на ОИСР  за прилагане  на изпитвани  химикали  по дермален  
(7) и инхалационен  път (7) (8). Глава  Б.8 от настоящото  приложение  (9) 
и глава  Б.29 от настоящото  приложение  (10), заедно  с Ръководство  на 
ОИСР  за изпитване  за остра  инхалаторна  токсичност  (8), следва  
специално  да бъдат  консултирани  при планирането  на по-дългосрочни  
проучвания , включващи  експозиция  по инхалационен  път. Глава  В.9 от 
настоящото  приложение  (11), следва  да бъде  консултирана  в случай  на 
изпитване , провеждано  по дермален  път. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 468
 
5. Изследването  за канцерогенност  предоставя  информация  за възможните  
рискове  за здравето , произтичащи  по всяка  вероятност  от повтаряща  се 
експозиция  за период , стигащ  до продължителността  на живота  на 
вида , който  се използва  при изследването . Изследването  предоставя  
информация  за токсичните  ефекти  на изпитвания  химикал , включ­  
ително  потенциална  канцерогенност , и може  да посочва  прицелните  
органи  и възможността  за акумулиране . То може  да предостави  
оценка  на нивото  без наблюдаван  неблагоприятен  ефект  за токсични  
ефекти  и — в случаите  с канцерогени , различни  от генотоксичните  — 
за туморни  отговори , което  може  да бъде  използвано  за установяване  
на критерии  за безопасност  при експозиция  на хора . Набляга  се и 
върху  нуждата  от обстойни  клинични  наблюдения , правени  над 
животни  с цел да се получи  колкото  е възможно  повече  информация . 
6. Целите  на изследванията  за канцерогенност , обхванати  от настоящия  
метод  за изпитване , включват : 
— идентифициране  на канцерогенните  свойства  на даден  изпитван  
химикал , водещи  до по-честа  поява  на тумори , по-голям  
пропорционален  дял на злокачествените  тумори , или до намаляване  
на времето  за поява  на тумори  в сравнение  с паралелни  контролни  
групи , 
— идентифициране  на прицелния (те) орган (и) за канцерогенността , 
— идентифициране  на времето  за поява  на тумори , 
— характеризиране  на зависимостта  доза-отговор  при тумори , 
— идентификация  на нивото  без наблюдаван  неблагоприятен  
ефект  (NOAEL) или на отправната  точка  за установяване  на 
еталонна  доза (BMD),  
— екстраполация  на канцерогенните  ефекти  за експозиция  на човека  
при ниски  нива  на доза, 
— предоставяне  на данни  на изпитване  на хипотези  относно  начина  на 
действие  (2) (7) (12) (13) (14) (15).  
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
7. При оценката  на потенциалната  канцерогенност  на даден  изпитван  
химикал  цялата  достъпна  информация  за изпитвания  химикал  следва  
да бъде  разгледана  от лабораторията , извършваща  изпитвания , преди  
провеждането  на изследването , с цел да се съсредоточи  планът  на 
изследването  върху  по-ефикасно  изпитване  на потенциала  за 
канцерогенност  и свеждане  до минимум  използването  на животни . 
Информацията  за и разглеждането  на начина  на действие  на предпол­  
агаемия  канцероген  (2) (7) (12) (13) (14) (15) е от особено  значение , тъй 
като оптималният  план  може  да се различава  в зависимост  от това дали  
изпитваният  химикал  е известен  или предполагаем  генотоксичен  
канцероген . Допълнителни  насоки  относно  разглеждането  на начина  
на действие  могат  да бъдат  намерени  в Ръководство  № 116 (7).  
8. Информация , която  ще помогне  за съставянето  на план  на 
изследването , включва  идентичност , химична  структура  и физични  и 
химични  свойства  на изпитвания  химикал ; резултатите  от всякакви  
извършени  in vitro  или in vivo  изпитвания  за токсичност , включително  
изпитвания  за генотоксичност ; очаквани  употреби  и потенциал  за 
експозиция  на човека ; налични  данни  за (количествена ) зависимост  
структура -активност , мутагенност /генотоксичност , канцерогенност  и 
други  токсикологични  данни  за химикали  със сходна  структура ; 
достъпни  токсикокинетични  данни  (данни  за кинетика  на еднократна , 
а също  и на повтаряща  се доза, където  са достъпни ) и данни , получени  
от други  изследвания  с повтаряща  се експозиция . Оценката  на ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 469
 
канцерогенността  трябва  да се извършва  след  получаване  на първон­  
ачална  информация  относно  токсичността  от 28-дневно  и/или 90- 
дневно  изпитвания  за токсичност  при повтаряща  се доза. Краткосрочни  
изпитвания  за зараждане  и размножение  на ракови  клетки  също  така 
биха  могли  да предоставят  полезна  информация . Поетапният  подход  за 
изпитван e за канцерогенност  следва  да се разглежда  като част от 
цялостната  оценка  на възможните  неблагоприятни  въздействия  на 
даден  изпитван  химикал  върху  здравето  (16) (17) (18) (19).  
9. Статистическите  методи , които  са най-подходящи  за анализ  на резулт­  
атите , като се имат  предвид  планът  на изследването  и целите , следва  да 
бъдат  определени  преди  началото  на изследването . Въпроси  за разг­  
леждане  включват  дали  статистиката  следва  да включва  корекция  за 
преживяемост , анализ  на кумулативни  рискове  от тумори , свързани  с 
продължителността  на преживяемостта , анализ  на времето  до 
образуване  на тумора  и анализ  в случай  на преждевременно  
прекратяване  на използването  на една  или повече  групи . Насоки  
относно  подходящите  статистически  анализи  и ключови  препратки  
към международно  приети  статистически  методи  са дадени  в Ръко­  
водство  № 116 (7), също  и в Ръководство  № 35 за анализ  и оценка  
на изследвания  за хронична  токсичност  и канцерогенност  (20).  
10. При провеждане  на изследването  за канцерогенност  ръководните  
принципи  и съображенията , формулирани  в Ръководство  № 19 на 
ОИСР  относно  признаването , оценяването  и използването  на 
клинични  признаци  като хуманен  край  за опитни  животни , използвани  
за оценка  на безопасността  (21), и по-специално  точка  62 от него , 
следва  винаги  да бъдат  спазвани . В тази точка  е посочено , че „при 
изследвания , включващи  прилагане  на повтарящи  се дози , когато  
дадено  животно  показва  клинични  признаци , които  са прогресивни , 
водещи  до по-нататъшно  влошаване  на състоянието , следва  да се 
вземе  информирано  решение  дали  да се разреши  или не животното  
да бъде  умъртвено  по хуманен  начин . Решението  следва  да включва  
съображение  относно  стойността  на информацията , която  ще бъде  
получена  от продължаване  на изследването  с даденото  животно  във 
връзка  с общото  му състояние . Ако се вземе  решение  за продължаване  
на изпитването  с животното , честотата  на наблюденията  трябва  
да се увеличи  доколкото  е необходимо . Би било  възможно  също  така , 
без да се засяга  неблагоприятно  целта  на изпитването , временно  да 
бъде  преустановено  дозирането , ако това  ще допринесе  за премахване  
на болката  или дистреса , или да бъде  намалена  дозата  на изпитва­  
нето .“ 
11. Подробни  насоки  относно  и обсъждане  на принципите  на избора  на 
доза за изследванията  за хронична  токсичност  и канцерогенност  могат  
да бъдат  намерени  в Ръководство  № 116 (7), както  и в две публикации  
на Международния  институт  за науките  за живота  (22) (23). Основната  
стратегия  за избор  на доза зависи  от основната  цел или цели  на 
изследването  (точка  6). При избора  на подходящи  нива  на доза 
следва  да се постигне  равновесие  между  скрининга  за опасност , от 
една  страна , и характеризирането  на отговорите  на ниски  дози  и 
тяхната  уместност , от друга  страна . Това  важи  особено  за случаите , в 
които  следва  да се проведе  комбинирано  изследване  за хронична  токс­  
ичност  и за канцерогенност  (глава  Б.33 от настоящото  приложение ) 
(точка  12).  
12. Следва  да се разгледа  възможността  за провеждане  на комбинирано  
изследване  за хронична  токсичност  и канцерогенност  (глава  Б.33 от 
настоящото  приложение ), вместо  отделно  провеждане  на изследване  
за хронична  токсичност  (глава  Б.30 от настоящото  приложение ) и на 
изследване  за канцерогенност  (настоящият  метод  за изпитване  Б.32). 
Комбинираното  изпитване  осигурява  по-голяма  ефикасност  по 
отношение  на време  и разходи  в сравнение  с провеждането  на две 
отделни  изследвания , без да се прави  компромис  с качеството  на 
данните  нито  във фазата  на изпитване  за хронична  токсичност , нито  
във фазата  за канцерогенността . Следва  обаче  да се обърне  внимание  
на принципите  на избора  на доза (точка  11 и 22—25), когато  се 
предприема  комбинирано  изследване  за хронична  токсичност  и 
канцерогенност  (глава  Б.33 от настоящото  приложение ), и също  така 
се признава , че по някои  нормативни  уредби  може  да се изискват  
отделни  изследвания . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 470
 
13. Определенията , използвани  в контекста  на настоящия  метод  за 
изпитване , са дадени  в края  на тази глава  и в Ръководство  № 116 (7).  
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
14. Изпитваният  химикал  се прилага  ежедневно , в постепенно  нарастващи  
дози , на няколко  групи  изпитвани  животни  за по-голямата  част от 
живота  им, обикновено  по орален  път. Изпитване  по инхалаторен  
или дермален  път може  също  да е подходящо . Животните  се набл­  
юдават  отблизо  за признаци  на токсичност  и за развитието  на 
отнасящи  се до новообразувания  увреждания . Животните , които  
умират  или са умъртвени  по време  на изпитването , се аутопсират , а 
преживелите  животни  се умъртвяват  и се аутопсират  при прик­  
лючването  на изпитването . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
15. Настоящият  метод  за изпитване  основно  обхваща  оценка  на 
канцерогенността  при гризачи  (вж. точка  2). Използването  на видове , 
различни  от гризачи , може  да бъде  разгледано , когато  наличните  данни  
показват , че те са по-подходящи  за прогнозиране  на последиците  за 
здравето  на човека . Изборът  на вида  следва  да се обоснове . Предпоч­  
итаният  вид е плъхът , въпреки  че могат  да се използват  и други  видове  
от гризачи , например  мишки . Въпреки  че използването  на мишки  в 
провеждането  на изпитвания  за канцерогенност  може  да има 
ограничена  полезност  (24) (25) (26), при някои  настоящи  регулаторни  
програми  все още се изисква  изпитване  за канцерогенност  при мишки , 
освен  ако се установи , че подобно  проучване  не е необходимо  от 
научна  гледна  точка . Плъховете  и мишките  са предпочитани  опитни  
модели  поради  тяхната  относително  кратка  продължителност  на 
живота , широкото  им използване  при фармакологични  и токсик­  
ологични  изследвания , тяхната  склонност  към образуване  на тумори , 
както  и наличието  на достатъчно  характеризирани  породи . В резултат  
на тези характеристики  е налично  голямо  количество  информация  
относно  тяхната  физиология  и патология . Допълнителна  информация  
за избора  на вид и порода  е представена  в Ръководство  № 116 (7).  
16. Следва  да се използват  здрави  млади  полово  зрели  животни  от 
обичайно  използваните  за лабораторни  изследвания  породи . 
Изследването  за канцерогенност  трябва  да се провежда  върху  
животни  от една  и съща  порода  и източник  като тези, които  са 
използвани  при предварителното (ите) изследване (ия) за токсичност  с 
по-малка  продължителност , но ако за животни  от тази порода  и 
източник  е известно , че могат  да причинят  проблеми  при постигането  
на обичайно  признатите  критерии  за преживяемост  при дългосрочни  
изследвания  [вж. Ръководство  № 116 (7)], следва  да се разгледа  
възможността  за използването  на порода  на животно , която  има 
приемлив  процент  на преживяемост  за дългосрочното  изследване . 
Женските  индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
17. Животните  могат  да бъдат  настанени  в клетките  индивидуално  или на 
малки  групи  от един  и същ пол; индивидуалното  настаняване  следва  да 
се разглежда  само  ако е научно  обосновано  (27) (28) (29). Клетките  
трябва  да бъдат  подредени  по такъв  начин , че възможните  ефекти  в 
резултат  на местоположението  на клетката  да бъдат  сведени  до 
минимум . Температурата  в стаята  на опитните  животни  трябва  да 
бъде  22 °C (± 3 °C). Въпреки  че относителната  влажност  трябва  да е 
най-малко  30 % и за предпочитане  да не превишава  70 %, освен  по 
време  на почистване  на помещението , целта  следва  да е 50—60 %. 
Осветлението  следва  да бъде  изкуствено , като последователността  е 
12 часа светлина , 12 часа тъмнина . За храненето  могат  да се 
използват  обичайните  лабораторни  хранителни  режими  с неограничен  
достъп  до вода  за пиене . Хранителният  режим  следва  да отговаря  на 
всички  изисквания  към храната  за съответния  изпитван  вид, а 
съдържанието  в храната  на замърсители , включващи , но без да се 
ограничават  до остатъци  от пестициди , устойчиви  органични  
замърсители , фитоестрогени , тежки  метали  и микотоксини , които  
биха  могли  да окажат  въздействие  върху  резултата  от изпитването , 
трябва  да е възможно  най-ниско . Следва  периодично  да се генерира  
аналитична  информация  относно  равнищата  на хранителните  вещества  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 471
 
и замърсителите  в хранителния  режим , най-малко  в началото  на 
изследването  и когато  има промяна  в използваната  партида , и същата  
следва  да бъде  включена  в окончателния  доклад . По подобен  начин  
следва  да бъде  предоставена  аналитична  информация  за питейната  
вода , използвана  в изследването . Изборът  на хранителен  режим  може  
да бъде  повлиян  от необходимостта  да се осигури  подходящо  смесване  
с изпитвания  химикал  и да бъдат  изпълнени  изискванията  за хранене  на 
животните , когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранителния  
режим . 
Подготовка  на животните  
18. Следва  да се използват  здрави  животни , които  предварително  са се аклим­  
атизирали  към лабораторните  условия  в продължение  най-малко  на 7 дни и 
върху  които  не са извършвани  предходни  опитни  процедури . При 
гризачите  дозирането  на животните  следва  да започне  колкото  е 
възможно  по-скоро  след отбиването  и аклиматизацията  и, за предпочитане , 
преди  животните  да навършат  8 седмици . Опитните  животни  трябва  да се 
опишат  по отношение  на вид, порода , източник  за доставка , пол, телесно  
тегло  и възраст . При започване  на изследването  колебанието  на 
индивидуалните  стойности  на телесното  тегло  на използваните  животни  
трябва  да бъде  минимално  и да не превишава  ± 20 % от средното  тегло  на 
всички  животни  от същия  пол в рамките  на изследването . Животните  се 
разпределят  на случаен  принцип  в контролни  групи  и групи  за третиране . 
След  прилагането  на подбора  на случаен  принцип  следва  да няма  знач­  
ителни  разлики  между  средните  стойности  на телесното  тегло  в отделните  
групи  в рамките  на съответния  пол. Ако съществуват  статистически  
значими  разлики , тогава  стъпката  по подбор  на случаен  принцип  трябва  
да се повтори , ако е възможно . За всяко  животно  се определя  уникален  
идентификационен  номер  и му се поставя  постоянна  маркировка  с този 
номер  чрез поставяне  на татуировка , имплантиране  на микрочип  или чрез 
друг  подходящ  метод . 
ПРОЦЕДУРА  
Брой  и пол на животните  
19. Следва  да се използват  и двата  пола . Трябва  да се използва  брой  
животни , който  е достатъчен  да направи  възможно  извършването  на 
задълбочена  биологична  и статистическа  оценка . Следователно  всяка  
група  с определена  доза и всяка  и паралелна  контролна  група  трябва  
да съдържат  най-малко  по 50 животни  от всеки  пол. В зависимост  от 
целта  на изследването  може  да бъде  възможно  увеличаване  на статист­  
ическата  мощност  на ключовите  оценки  чрез диференцирано  
неравномерно  разпределяне  на животни  по групите  с различни  дози , 
с повече  от 50 животни  в групите  с ниски  дози ; например , за 
определяне  на канцерогенен  потенциал  при ниски  дози . Следва  да се 
признае  обаче , че умерено  увеличение  на размера  на групата  ще доведе  
до относително  слабо  нарастване  на статистическата  мощност  на 
изследването . Допълнителна  информация  относно  статистическия  
план  на изследването  и избора  на нива  на доза за максимизиране  на 
статистическата  мощност  се дава в Ръководство  № 116 (7).  
Планиране  на междинни  умъртвявания  и сателитни  групи  (индик­  
аторни  групи ) 
20. Проучването  може  да предвижда  междинни  умъртвявания , например  на 
12 месеца , за предоставяне  на информация  за напредването  на 
отнасящи  се до новообразувания  изменения  и механистична  
информация , ако е научно  обосновано . Когато  такава  информация  
вече е достъпна  от предходни  изследвания  на изпитвания  химикал  за 
токсичност  при повтарящи  се дози , възможно  е междинните  
умъртвявания  да не са научно  обосновани . Ако в плана  на 
изследването  са включени  междинни  умъртвявания , броят  на 
животните  във всяка  група  с определена  доза, определени  за 
междинно  умъртвяване , обичайно  е 10 животни  от пол, и общият  
брой  животни , включени  в плана  на изследването , трябва  да бъде  
увеличен  с броя  животни , които  са планирани  за междинно  
умъртвяване  преди  края  на изследването . Допълнителна  индикаторна  
група  от животни  (обикновено  по 5 животни  от всеки  от двата  пола ) 
може  да бъде  включена , за мониторинг  на здравния  статус  по време  на 
изследването , ако е необходимо  (30). По-нататъшни  насоки  са предо­  
ставени  в Ръководство  № 116 (7).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 472
 
Групи  с определени  дози  и дозиране  
21. Насоки  по всички  аспекти  на избора  на доза и интервалите  между  
нивата  на доза са предоставени  в Ръководство  № 116 (7). Следва  да 
се приложат  най-малко  три нива  на доза и да се използва  паралелна  
контролна  група . Нивата  на доза обичайно  са основани  на резултатите  
от по-краткосрочни  изследвания  при повтаряща  се доза, или на 
изследвания  за определяне  на обхвата , и следва  да са съобразени  с 
всякакви  достъпни  токсикологични  и токсикокинетични  данни  за 
изпитвания  химикал  или за свързани  с него  химикали . 
22. Освен  ако не е ограничено  от физичното  или химичното  естество , или 
от биологичните  ефекти  на изпитвания  химикал , най-високото  ниво  на 
доза следва  да се избере  така, че да се установят  основните  прицелни  
органи  и токсични  ефекти , като същевременно  се избягва  страдание , 
силна  токсичност , заболяемост  или смърт . Като  се вземат  предвид  
факторите , изложени  в точка  23 по-долу , най-високото  ниво  на доза 
трябва  да бъде  избрано  така, че да предизвиква  признаци  на токс­  
ичност , доказвани  например  с потискане  наддаването  на тегло  (около  
10 %). Въпреки  това, в зависимост  от целите  на изследването  (вж. 
точка  6), може  да бъде  избрана  максимална  доза, която  да е по-ниска  
от дозата , доказваща  наличието  на токсичност , например , ако при 
дадена  доза се проявява  неблагоприятен  ефект , който  дава повод  за 
загриженост , но който  има незначително  влияние  върху  продължит­  
елността  на живота  или телесното  тегло . 
23. Нивата  на доза и интервалите  между  тях могат  да бъдат  избрани  така, 
че да бъдат  установени  зависимостта  доза-отговор  и — в зависимост  от 
начина  на действие  на изпитвания  химикал  — NOAEL или други  
очаквани  резултати  от изследването , например  BMD ( вж. точка  25) 
при най-ниското  ниво  на доза. Фактори , които  следва  да бъдат  разг­  
ледани  при поставянето  на по-ниски  дози , включват  очаквания  наклон  
на кривата  доза-отговор , дозите , при които  могат  да настъпят  важни  
промени  в метаболизма  или в начина  на токсично  действие , когато  се 
очаква  праг , или когато  се очаква  отправна  точка  за екстраполиране  на 
ниски  дози . 
24. Избраните  интервали  между  нивата  на доза зависят  от 
характеристиките  на изпитвания  химикал  и не могат  да бъдат  
предписани  в настоящия  метод  за изпитване , но от двукратни  до 
четирикратни  интервали  често  дават  добри  параметри  на изпитването , 
когато  се използват  за определяне  на намаляващите  нива  на доза и 
добавянето  на четвърта  група  за изпитване  често  се предпочита  пред  
използване  на големи  интервали  (например  с кратност , надвишаваща  
6—10 пъти ) между  дозирането . По принцип  използване  на кратност  
над 10 следва  да се избягва  и, ако се използва , следва  да бъде  обос­  
новано . 
25. Както  е допълнително  разгледано  в Ръководство  № 116 (7), точки , 
които  трябва  да бъдат  взети  предвид  при избора  на доза, включват : 
— познати  или предполагаеми  нелинейни  зависимости  или инфлексни  
точки  в зависимостта  доза-отговор , 
— токсикокинетика  и обхвати  на дозиране , при които  се получава , или 
не се получава , метаболитна  индукция , насищане  или нелинейна  
зависимост  между  външни  и вътрешни  дози , 
— увреждания -прекурсори , маркери  на ефект  или показатели  за 
протичане  в дълбочина  на ключови  биологични  процеси , 
— ключови  (или предполагаеми ) аспекти  на начина  на действие , като 
например  дози , при които  започва  да се проявява  цитотоксичност , 
появяват  се нарушения  в хормоналните  равнища  и механизмите  на 
хомеостазата , и др., ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 473
 
— области  от кривата  доза-отговор , в които  е необходима  особено  
устойчива  оценка , напр . в обхвата  на очакваната  BMD или предп­  
олагаем  праг , 
— съобразяване  на предполагаеми  нива  на експозиция  на човека . 
26. Контролната  група  не се третира  или е контролна  група  за носителя  в 
случаите , когато  за въвеждането  на изпитвания  химикал  се използва  
носител . С изключение  на самата  обработка  с изпитвания  химикал , 
животните  в контролната  група  следва  да се третират  по същия  
начин  като тези от групите  за изпитване . Когато  се използва  носител , 
животните  от контролната  група  се третират  с най-големия  обем  
носител  измежду  обемите , при които  се третират  групите  на дози . 
Ако изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранителен  режим  и 
причинява  значително  намаляване  на приема  на храна  поради  
понижени  вкусови  качества  на хранителния  режим , може  да бъде  
полезна  допълнителна  контролна  група , получаваща  същото  количество  
храна , която  да служи  като по-подходяща  контрола . 
Приготвяне  на дозите  и прилагане  на изпитвания  химикал  
27. Изпитваният  химикал  обичайно  се прилага  през устата , чрез 
хранителния  режим  или питейната  вода , или чрез хранене  през сонда . 
Допълнителна  информация  за пътища  и начини  на прилагане  е 
представена  в Ръководство  № 116 (7). Пътят  и начинът  на прилагане  
зависят  от целта  на изследването , физичните  и химичните  свойства  на 
изпитвания  химикал , неговата  биодостъпност  и преобладаващия  път и 
начин  на експозиция  на хора . Следва  да се представи  обосновка  за 
избрания  път и начин  на прилагане . С оглед  на хуманното  
отношение  към животните , храненето  по орален  път през сонда  
обичайно  следва  да се избере  само  за онези  агенти , за които  този път 
и начин  на прилагане  е в разумна  степен  представителен  за потенци­  
алната  експозиция  на хора  (напр . фармацевтични  продукти ). За 
химикали , свързани  с хранителния  режим  или с околната  среда , включ­  
ително  пестициди , прилагането  е обичайно  чрез хранителен  режим  или 
чрез питейната  вода . Въпреки  това, при някои  сценарии , напр . проф­  
есионална  експозиция , прилагане  по други  пътища  може  да бъде  по- 
подходящо . 
28. Когато  е необходимо , изпитваният  химикал  е в разтвор  или в суспензия  
в подходящ  носител . Трябва  да бъдат  разгледани  следните  
характеристики  на носителя  и, съответно , други  добавки : ефекти  
върху  абсорбцията , разпределението , метаболизма  или задържането  на 
изпитвания  химикал ; ефекти  върху  химичните  свойства  на изпитвания  
химикал , които  могат  да изменят  токсикологичните  му характеристики ; 
и ефектите  върху  консумирането  на храна  или вода , или хранителния  
статус  на животните . Препоръчва  се, когато  е възможно , най-напред  да 
се прецени  дали  може  се използва  воден  разтвор /суспензия , след  това 
— разтвор /емулсия  в масло  (напр . царевично  олио ), а след  това — 
разтваряне  в други  носители . Когато  се използват  други  носители  
освен  водата , трябва  да се познават  токсикологичните  свойства  на 
носителя . Следва  да е достъпна  информация  относно  стабилността  на 
изпитвания  химикал  и хомогенността  на разтворите  за дозиране  или на 
храната  (в зависимост  от случая ) при условията  на прилагане  (напр . 
чрез хранителен  режим ). 
29. За химикали , които  се прилагат  чрез хранителен  режим  или вода  за 
пиене , е важно  да се гарантира , че количеството  изпитван  химикал  не 
въздейства  върху  нормалното  хранене  и водния  баланс . При 
дългосрочни  изследвания  за токсичност  с прилагане  чрез хранителния  
режим  концентрацията  на изпитвания  химикал  в храната  по принцип  
не трябва  да надвишава  горна  граница  от 5 % от общото  количество  
храна , с цел да се избегне  небалансирано  хранене . Когато  изпитваният  
химикал  се прилага  с храната , може  да се използва  или постоянна  
концентрация  в храната  (mg/kg храна  или ppm), или постоянно  ниво  
на доза от гледна  точка  на телесното  тегло  на животното  (mg на kg 
телесно  тегло ), изчислявани  на седмична  основа . Използваната  
алтернатива  трябва  да бъде  посочена . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 474
 
30. В случай  на прилагане  по орален  път дозата  изпитван  химикал  се дава 
на животните  ежедневно  (седем  дни в седмицата ), обикновено  за 
период  от 24 месеца  за гризачи  (вж. също  точка  32). Необходимо  е 
да се обосноват  причините  за използването  на всякакъв  друг  режим  на 
дозиране , например  пет дни в седмицата . В случай  на прилагане  по 
дермален  път животните  обичайно  са третирани  с изпитвания  химикал  
в продължение  на най-малко  6 часа в денонощието , 7 дни в седмицата , 
както  е определено  в глава  Б.9 от настоящото  приложение  (11), за 
период  от 24 месеца . Експозицията  по инхалаторен  път се извършва  
в продължение  на 6 часа в денонощието , 7 дни в седмицата , но 
експозиция  за 5 дни седмично  също  може  да бъде  прилагана , ако е 
обоснована . Периодът  на експозицията  по принцип  е с продължит­  
елност  от 24 месеца . Ако експозиция  на вид гризач , различен  от 
плъх , е само  през носа , максималната  продължителност  на експоз­  
ицията  може  да бъде  адаптирана  така, че да се минимизира  специф­  
ичният  за този вид дистрес . Трябва  да бъде  предоставена  обосновка  
при използване  на продължителност  на експозицията  по-малка  от 6 
часа дневно . Вж. също  глава  Б.8 от настоящото  приложение  (9). 
31. Когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез сонда  на животните , това 
следва  да се извърши  посредством  стомашна  тръбичка  или подходяща  
канюла  за интубация , по едно  и също  време  всеки  ден. Обикновено  
еднократната  доза се прилага  веднъж  дневно , но когато  например  даден  
химикал  е местен  дразнител , може  да е възможно  поддържането  на 
ежедневната  доза да се извършва  чрез прилагането  ѝ като разделена  
доза (два пъти  дневно ). Максималният  обем  течност , който  може  да 
бъде  въведен  еднократно , зависи  от телесното  тегло  на изпитваното  
животно . Обемът  следва  да се запазва  възможно  най-нисък  и по 
принцип  не следва  да надхвърля  1 ml/100 g телесно  тегло  за гризачи  
(31). Варирането  на обема  за изпитването  следва  да бъде  сведено  до 
минимум  чрез настройване  на концентрацията  така, че да се осигури  
постоянен  обем  при всички  нива  на доза. Потенциално  корозивните  
или дразнещи  химикали  са изключение  и трябва  да бъдат  разредени , 
за да се избегнат  силни  локални  ефекти . Изпитването  при конце­  
нтрации , за които  съществува  вероятност  да причиняват  корозивно  
или дразнещо  действие  върху  стомашно -чревния  тракт , следва  да се 
избягва . 
Продължителност  на изпитването  
32. Продължителността  на изследването  обичайно  е 24 месеца  за гризачи , 
представляващи  по-голямата  част от нормалната  продължителност  на 
живота  на животните , които  ще бъдат  използвани . По-дълги  или по- 
къси  продължителности  на изследване  могат  да бъдат  използвани , в 
зависимост  от продължителността  на живота  на породата  от 
изследвания  животински  вид, но следва  да бъдат  обосновани . За 
конкретни  породи  мишки , напр . AKR/J, C3H/J или C57BL/6J, продъ­  
лжителност  от 18 месеца  може  да е по-подходяща . Следното  също  така 
предоставя  някои  насоки  относно  продължителността , прекратяването  
на изследването  и преживяемостта ; допълнителни  насоки , включително  
разглеждане  на приемливостта  на отрицателен  резултат  от изпитване  за 
канцерогенност , свързан  с преживяемостта  в изследването , са предо­  
ставени  в Ръководство  на ОИСР  № 116 за планиране  и провеждане  
на изследвания  за хронична  токсичност  и за канцерогенност  (7). 
— Следва  да се разгледа  възможност  за прекратяване  на изследването , 
когато  броят  на преживелите  животни  в групите  на по-ниски  дози  
или в контролната  група  спадне  под 25 процента . 
— В случая , когато  само  животните  от групата  с висока  доза умират  
преждевременно  поради  токсичност , това не следва  да води  до 
прекратяване  на изследването . 
— Преживяването  на всеки  от двата  пола  трябва  да се разглежда  
отделно . 
— Изследването  не следва  да бъде  продължавано  отвъд  точката , в 
която  достъпните  данни  от изследването  вече не са достатъчни  за 
даване  на възможност  за извършване  на статистически  обоснована  
оценка . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 475
 
НАБЛЮДЕНИЯ  
33. Всички  животни  трябва  да бъдат  проверявани  за заболяемост  или 
смъртност , обикновено  в началото  и в края  на всеки  ден, включително  
в съботни  и неделни  дни и празници . Животните  следва  допълнително  
да бъдат  проверявани  веднъж  на ден за специфични  сигнали  от токс­  
икологична  значимост , като се взема  предвид  върховият  период  на 
очакваните  ефекти  след  получаване  на дозата  в случай  на прилагане  
чрез хранене  през сонда . Специално  внимание  трябва  да се обърне  на 
развитието  на тумори : трябва  да се регистрират  времето  на поява , 
локализацията , размерите , външният  вид и развитието  на всички  
тумори , които  могат  да бъдат  видяни  и опипани  при макроскопско  
изследване . 
Телесно  тегло , консумация  на храна /вода  и усвояване  на храната  
34. Всички  животни  трябва  да бъдат  претегляни  в началото  на 
третирането , след  това най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . 
Измерването  на консумацията  на храна  и на усвояването  на храната  
следва  да се извършва  най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . Консум­  
ацията  на вода  трябва  да се измерва  най-малко  веднъж  седмично  в 
продължение  на първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  
месечно , ако химикалът  се прилага  чрез питейната  вода . Измервания  
на консумацията  на вода  също  следва  да бъдат  предвидени  при 
изследвания , при които  питейната  активност  се изменя . 
Хематология , клинична  биохимия  и други  измервания  
35. С цел получаване  на максимално  количество  информация  от 
изследването , особено  относно  съображения  за начина  на действие , 
по преценка  на ръководителя  на изследването  могат  да бъдат  взети  
кръвни  проби  за хематология  и клинична  биохимия . Изследване  на 
урината  може  също  да е подходящо . Допълнителни  насоки  относно  
стойността  на вземането  на такива  проби  като част от изследване  за 
канцерогенност  са представени  в Ръководство  № 116 (7). Ако бъде  
счетено  за целесъобразно , изследвания  на кръвни  проби  за хематология  
и клинична  химия  и на урина  могат  да се провеждат  като част от 
междинно  умъртвяване  (точка  20) и при прекратяване  на изследване , 
върху  минимум  10 животни  от пол за група . Кръвните  проби  се вземат  
от избран  обект , например  чрез сърдечна  пункция , или от 
ретроорбиталния  синус , под упойка , и следва  да се съхраняват  при 
подходящи  условия , ако е приложимо . Кръвни  натривки  може  също  
така да се подготвят  за изследване , особено  ако костният  мозък  
изглежда  да е прицелният  орган , въпреки  че стойността  на това 
изследване  за оценка  на канцерогенния /онкогенния  потенциал  е под 
съмнение  (32).  
ПАТОЛОГИЯ  
Макроскопска  аутопсия  
36. Всички  животни , подложени  на изследване , с изключение  на животни  
от индикаторна  група  (вж. точка  20) и други  животни  от сателитни  
групи , следва  да бъдат  подложени  на пълна , подробна  макроскопска  
аутопсия , която  включва  внимателен  преглед  на външната  повърхност  
на тялото , всички  отвори  и черепната , гръдната  и коремната  кухини  и 
тяхното  съдържание . За животни  от индикаторна  група  и други  
животни  от сателитни  групи  може  да се изисква  аутопсия  въз основа  
на всеки  отделен  случай , по преценка  на ръководителя  на изследването . 
Претеглянето  на органи  обичайно  не е част от изследването  за 
канцерогенност , тъй като старческите  изменения  и, на по-късен  етап, 
развитието  на тумори , оказват  неблагоприятно  влияние  върху  полез­  
ността  на данните  за теглото  на отделните  органи  поради  невъ­  
зможност  за разграничаване . Те обаче  могат  да бъдат  от решаващо  
значение  за извършване  на оценка  на значимостта  на доказателствения  
материал  и особено  за съображенията  относно  начина  на действие . Ако 
са част от сателитно  изследване , те следва  да бъдат  събрани  не по- 
късно  от една  година  след  началото  на изследването . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 476
 
37. Следните  тъкани  следва  да бъдат  консервирани  в среда  за фиксиране , 
най-подходяща  както  за вида  тъкан , така и за очакваното  последващо  
хистопатологично  изследване  (33) (тъканите  в средни  скоби  са по 
избор ): 
всички  макроскопски  
увреждания  сърце  панкреас  стомах  ( предстомах , 
жлезист  стомах ) 
надбъбречна  жлеза  илеум  околощитовидна  
жлеза  [зъби ] 
аорта  празно  черво  периферен  нерв  тестис  
мозък  (включително  
срезове  от главния  мозък , 
малкия  мозък  и моста ) бъбреци  хипофиза  тимус  
цекум  слъзна  жлеза  
(клепачна ) простатна  жлеза  щитовидна  жлеза  
шийка  на матката  черен  дроб  право  черво  [ език] 
коагулираща  жлеза  бял дроб  слюнчена  жлеза  трахея  
колон  лимфни  възли  (както  
повърхностни , така и 
дълбоки ) семенно  мехурче  пикочен  мехур  
дванадесетопръстник  млечна  жлеза  (задълж­  
ителна  за женските  и 
— ако очевидно  може  
да им бъде  извършена  
дисекция  — от 
мъжките ) скелетен  мускул  матка  ( включително  
шийката ) 
епидидим  [ горни  дихателни  
пътища , включително  
нос, спирални  кости  
на носа  и допълн­  
ителни  околоносни  
кухини ] кожа  [ уретер ] 
око (включително  ретина ) хранопровод  гръбначен  мозък  (на 
три нива : шийно , 
гръдно  и поясно  ниво ) [уретра ] 
[бедрена  кост и става ] [обонятелна  луковица ] далак  влагалище  
жлъчен  мехур  (за видове , 
различни  от плъх ) яйчници  [ гръдна  кост] срез от костен  мозък  и/или 
костномозъчен  аспират , 
прясно  фиксиран  
Хардерова  жлеза  
В случай  на чифтен  орган , например  бъбреци  и надбъбречни  жлези , 
следва  да се консервират  и двата  органа . Клиничните  и другите  
находки  могат  да посочат  необходимостта  от изследвания  на допълн­  
ителни  тъкани . Всякакви  други  органи , които  на основата  на познатите  
свойства  на изпитвания  химикал  се считат  за вероятни  прицелни  
органи , също  следва  да бъдат  консервирани . При изследвания , 
включващи  дермален  път на прилагане , следва  да бъдат  консервирани  
органите , посочени  в списъка  за прилагане  по орален  път, като спец­  
ифично  вземане  на проби  и консервиране  на кожа  от мястото  на 
прилагане  е от съществено  значение . При изследвания  по инхалаторен  
път списъкът  с тъканите  от дихателните  пътища  за консервиране  и 
изследване  следва  да е в съответствие  с препоръките  от глави  Б.8. и 
Б.29. от настоящото  приложение . По отношение  на други  органи / 
тъкани  (и в допълнение  към специално  консервираните  тъкани  от 
дихателните  пътища ) органите , които  следва  да бъдат  изследвани , са 
посочени  в списъка  за прилагане  по орален  път. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 477
 
Хистопатология  
38. Достъпни  са насоки  относно  най-добрите  практики  при провеждането  
на изследвания  на токсикологичната  патология  (33). Изследваните  
тъкани  следва  да бъдат  най-малко : 
— всички  тъкани  от животните  от групата  с висока  доза и от 
контролната  група , 
— всички  тъкани  от животните , които  са в терминално  състояние  или 
са умъртвени  по време  на изследването , 
— всички  тъкани , при които  се наблюдават  макроскопски  аномалии , 
включително  тумори , 
— когато  свързани  с третирането  хистопатологични  промени  се набл­  
юдават  в групата  с най-висока  доза, същите  тези тъкани  трябва  да 
бъдат  изследвани  върху  всички  животни  от групите  с всички  дози , 
различни  от най-високата , 
— в случай  на чифтни  органи , например  бъбреци  и надбъбречни  
жлези , следва  да се изследват  и двата  органа . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
39. Следва  да бъдат  посочени  индивидуални  данни  за животните  за всички  
оценени  параметри . Допълнително  всички  данни  следва  да се обобщят  
в таблична  форма , показваща  за всяка  изпитвана  група  броя  на 
животните  при започване  на изпитването , броя  на животните , които  
са открити  мъртви  по време  на изследването  или са били  умъртвени  
по хуманни  причини , и времето  на смъртта  или умъртвяването  по 
хуманни  причини , броя  на животните  с проявени  признаци  на токс­  
ичност , описание  на наблюдаваните  признаци  на токсичност , включ­  
ително  времето  на започването , продължителността  и силата  на 
всички  токсични  въздействия , броя  на животните  с увреждания , типа  
на уврежданията  и процента  на животните , показващи  всеки  отделен  
тип увреждане . В таблици  с обобщени  данни  следва  да се посочат  
средните  стойности  и стандартните  отклонения  (за непрекъснатите  
данни  от изпитвания ) при животни , показващи  токсично  въздействие  
или при които  са налице  увреждания , в допълнение  към степенуването  
на уврежданията . 
40. Контролните  данни  за минали  периоди  могат  да бъдат  полезни  при 
интерпретирането  на резултатите  от изследването , например  в случай , 
когато  има признаци , че данните , предоставени  от паралелни  контроли , 
показват  съществено  несъответствие  при сравнение  с актуални  данни  
от контролни  животни  от една  и съща  извършваща  изпитвания  
лаборатория /колония . Ако контролните  данни  за минали  периоди  са 
оценени , следва  да се представят  от същата  лаборатория , да се 
отнасят  за животни  на една  и съща  възраст  и от една  и съща  порода , 
и да са генерирани  през петте  години , предхождащи  съответното  
изследване . 
41. Където  е приложимо , числовите  резултати  следва  да се оценяват  чрез 
използване  на подходящ  и общоприет  статистически  метод . Статист­  
ическите  методи  и данните , които  следва  да се анализират , трябва  да се 
избират  по време  на планирането  на изследването  (точка  9). Изборът  
трябва  да предвижда  възможност  за корекция  за преживяемост , ако е 
необходимо . 
Доклад  от изпитването  
42. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— физическа  природа , чистота  и физични  и химични  свойства ; 
— данни  за идентифициране  на химикала ; ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 478
 
— източник  на химикала ; 
— номер  на партидата ; 
— сертификат  за химичен  анализ ; 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— обосновка  за избора  на носител  (когато  носителят  е различен  от 
вода ); 
Изпитвани  животни : 
— използван  вид/порода  и обосновка  за направения  избор ; 
— брой , възраст  и пол на животните  в началото  на изпитването ; 
— източник , условия  на отглеждане , хранителен  режим  и т.н.; 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на изпитването ; 
Условия  на изпитването : 
— обосновка  за пътя  на прилагане  и избора  на доза; 
— когато  е приложимо , използваните  статистически  методи  за анализ  
на данните ; 
— подробна  информация  за състава  на изпитвания  химикал /изг­ 
отвянето  на хранителния  режим . 
— аналитични  данни  за достигната  концентрация , стабилност  и 
хомогенност  на сместа ; 
— път на прилагане  и подробна  информация  за прилагането  на 
изпитвания  химикал ; 
— за изследвания  по инхалаторен  път, дали  е само  през носа , или на 
цялото  тяло ; 
— действителните  дози  (mg на kg телесно  тегло  дневно ) и коефициент  
на превръщане  от концентрация  на изпитвания  химикал  в храна / 
питейна  вода  (mg на kg или ppm) в действителна  доза, ако е прил­  
ожимо ; 
— подробности  относно  качество  на храната  и водата ; 
Резултати  (следва  да се представят  обобщени  таблични  данни  и 
индивидуални  данни  за животните ): 
Общи  положения  
— данни  за преживяемостта ; 
— телесно  тегло /промени  в телесното  тегло ; 
— консумация  на храна , изчисления  на усвояването  на храната , ако са 
извършени , и потребление  на вода , ако е приложимо ; 
— токсикокинетични  данни  (ако са налични ); 
— офталмоскопия  (ако е налична ); 
— хематология  (ако е налична ); 
— клинична  химия  (ако е налична ); ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 479
 
Клинични  находки  
— признаци  на токсичност ; 
— поява  (и сила , ако е степенувана ) на всякакви  аномалии ; 
— природа , сила  и продължителност  на наблюдаваните  клинични  
признаци  (независимо  обратими  или необратими ); 
Данни  от аутопсията  
— телесната  маса  при настъпване  на смъртта ; 
— тегло  на органите  и техните  съотношения , ако е приложимо ; 
— находки  при аутопсията ; поява  и сила  на аномалиите ; 
Хистопатология  
— хистопатологични  находки , които  не се отнасят  до ново­  
образувания ; 
— хистопатологични  находки , които  се отнасят  до новообразувания ; 
— съответствие  между  находките  от макроскопското  и 
микроскопското  изследване ; 
— подробно  описание  на всички  свързани  с третирането  хистопат­  
ологични  находки , включително  степенуването  на силата ; 
— отчет  за всякакви  партньорски  проверки  на предметни  стъкла ; 
Статистическа  обработка  на резултатите , където  е приложимо  
Обсъждане  на резултатите , включващо  
— обсъждане  на всякакви  подходи  за моделиране ; 
— зависимости  доза-отговор ; 
— контролни  данни  за минали  периоди ; 
— разглеждане  на всякаква  информация , свързана  с начин  на 
действие ; 
— определяне  на BMD, NOAEL или LOAEL;  
— относимост  към човека ; 
Заключения  
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (1995). Report of the Consultation Meeting on Sub-chronic and 
Chronic Toxicity/Carcinogenicity Testing (Rome, 1995), internal working 
document, Environment Directorate, OECD, Paris.  
(2) EPA (2005). Guidelines for Carcinogen Risk Assessment Risk Assessment 
Forum U.S. Environmental Protection Agency Washington, DC.  
(3) Combes RD, Gaunt, I, Balls M (2004). A Scientific and Animal Welfare 
Assessment of the OECD Health Effects Test Guidelines for the Safety 
Testing of Chemicals under the European Union REACH System. ATLA 32: 163-208.
 
(4) Barlow SM, Greig JB, Bridges JW et al (2002). Hazard identification by 
methods of animal-based toxicology. Food. Chem. Toxicol. 40: 145-191.  
(5) Chhabra RS, Bucher JR, Wolfe M, Portier C (2003). Toxicity characteri ­
zation of environmental chemicals by the US National Toxicology 
Programme: an overview. Int. J. Hyg. Environ. Health 206: 437-445.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 480
 
(6) Глава  Б.27 от настоящото  приложение  („Изследване  на субхронична  
орална  токсичност  — 90-дневно  изследване  на токсичността  при не 
гризачи  с повтаряща  се доза“). 
(7) OECD (2012). Guidance Document on the Design and Conduct of Chronic 
Toxicity and Carcinogenicity Studies, Supporting Test Guidelines 451, 452 
and 453 - Second edition. Series on Testing and Assessment № 116, 
available on the OECD public website for Test Guideline at www.oecd.org/ env/testguidelines.
 
(8) OECD (2009). Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing, 
Series on Testing and Assessment № 39, ENV/JM/MONO(2009)28, 
OECD, Paris.  
(9) Глава  Б.8 от настоящото  приложение  („Субакутна  инхалаторна  токс­  
ичност : 28-дневно  изследване “). 
(10) Глава  Б.29 от настоящото  приложение  („Субхронична  инхалаторна  
токсичност : 90-дневно  изследване “). 
(11) Глава  Б.9 от настоящото  приложение  („Токсичност  (дермална ) с 
многократни  дози  (28 дни)“). 
(12) Boobis AR, Cohen SM, Dellarco V, McGregor D, Meek ME, Vickers C, 
Willcocks D, Farland W (2006). IPCS Framework for analyzing the 
Relevance of a Cancer Mode of Action for Humans. Crit. Rev. in Toxicol, 36: 793-801.
 
(13) Cohen SM, Meek ME, Klaunig JE, Patton DE, and Fenner-Crisp PA 
(2003). The human relevance of information on carcinogenic Modes of Action: An Overview. Crit. Rev. Toxicol. 33:581-589.
 
(14) Holsapple MP, Pitot HC, Cohen SN, Boobis AR, Klaunig JE, Pastoor T, 
Dellarco VL, Dragan YP (2006). Mode of Action in Relevance of Rodent Liver Tumors to Human Cancer Risk. Toxicol. Sci. 89:51-56.
 
(15) Meek EM, Bucher JR, Cohen SM, Dellarco V, Hill RN, 
Lehman-McKemmon LD, Longfellow DG, Pastoor T, Seed J, Patton DE (2003). A Framework for Human Relevance analysis of Information on 
Carcinogenic Modes of Action. Crit. Rev. Toxicol. 33:591-653.
 
(16) Carmichael NG, Barton HA, Boobis AR et al (2006). Agricultural 
Chemical Safety Assessment: A Multisector Approach to the Moderni ­
zation of Human Safety Requirements. Critical Reviews in Toxicology 
36: 1-7.  
(17) Barton HA, Pastoor TP, Baetcke T et al (2006). The Acquisition and 
Application of Absorption, Distribution, Metabolism, and 
Excretion (ADME) Data in Agricultural Chemical Safety Assessments. Critical Reviews in Toxicology 36: 9-35.
 
(18) Doe JE, Boobis AR, Blacker A et al (2006). A Tiered Approach to 
Systemic Toxicity Testing for Agricultural Chemical Safety Assessment. Critical Reviews in Toxicology 36: 37-68.
 
(19) Cooper RL, Lamb JS, Barlow SM et al (2006). A Tiered Approach to Life 
Stages Testing for Agricultural Chemical Safety Assessment. Critical Reviews in Toxicology 36: 69-98.
 
(20) OECD (2002). Guidance Notes for Analysis and Evaluation of Chronic 
Toxicity and Carcinogenicity Studies, Series on Testing and Assessment № 35 and Series on Pesticides № 14, ENV/JM/MONO(2002)19, OECD, 
Paris.
 
(21) OECD (2000). Guidance Document on the recognition, assessment, and use 
of clinical signs as humane endpoints for experimental animals used in 
safety evaluation, Series on Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MO ­
NO(2000)7, OECD, Paris.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 481
 
(22) Rhomberg LR, Baetcke K, Blancato J, Bus J, Cohen S, Conolly R, Dixit R, 
Doe J, Ekelman K, Fenner-Crisp P, Harvey P, Hattis D, Jacobs A, 
Jacobson-Kram D, Lewandowski T, Liteplo R, Pelkonen O, Rice J, Somers D, Turturro A, West, W, Olin S(2007). Issues in the Design and Interpretation of Chronic Toxicity and Carcinogenicity Studies in Rodents: 
Approaches to Dose Selection Crit Rev. Toxicol. 37 (9): 729 – 837.
 
(23) ILSI (International Life Sciences Institute) (1997). Principles for the 
Selection of Doses in Chronic Rodent Bioassays. Foran JA (Ed.). ILSI Press, Washington, DC.
 
(24) Griffiths SA, Parkinson C, McAuslane JAN and Lumley CE (1994). The 
utility of the second rodent species in the carcinogenicity testing of phar ­
maceuticals. The Toxicologist 14(1):214.  
(25) Usui T, Griffiths SA and Lumley CE (1996). The utility of the mouse for 
the assessment of the carcinogenic potential of pharmaceuticals. In D’Arcy 
POF & Harron DWG (eds). Proceedings of the Third International Conference on Harmonisation. Queen’s University Press, Belfast. pp 279- 284.
 
(26) Carmichael NG, Enzmann H, Pate I, Waechter F (1997). The Significance 
of Mouse Liver Tumor Formation for Carcinogenic Risk Assessment: Results and Conclusions from a Survey of Ten Years of Testing by the Agrochemical Industry. Environ Health Perspect. 105:1196-1203.
 
(27) Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
22 септември  2010 година  относно  защитата  на животните , използвани  
за научни  цели  (ОВ L 276, 20.10.2010 г., стр. 33).  
(28) National Research Council, 1985. Guide for the care and use of laboratory 
animals. NIH Publication № 86-23. Washington, D.C., US Dept. of Health 
and Human Services.  
(29) GV-SOLAS (Society for Laboratory Animal Science, Gesellschaft für 
Versuchstierkunde, 1988). Publication on the Planning and Structure of 
Animal Facilities for Institutes Performing Animal Experiments. ISBN 3- 906255-04-2.
 
(30) GV-SOLAS (Society for Laboratory Animal Science, Gesellschaft für 
Versuchstierkunde, 2006). Microbiological monitoring of laboratory 
animals in various housing systems.  
(31) Diehl K-H, Hull R, Morton D, Pfister R, Rabemampianina Y, Smith D, 
Vidal J-M, van de Vorstenbosch C. (2001). A good practice guide to the 
administration of substances and removal of blood, including routes and 
volumes. Journal of Applied Toxicology 21:15-23.  
(32) Weingand K,  et al.  (1996). Harmonization of Animal Clinical Pathology 
Testing in Toxicity and Safety Studies. Fund. Appl. Toxicol. 29: 198-201.  
(33) Crissman J, Goodman D, Hildebrandt P,  et al.  (2004). Best Practices 
Guideline: Toxicological Histopathology. Toxicologic Pathology 32: 126-131.
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 482
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  на 
настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 483
 
Б.33. КОМБИНИРАНИ  ИЗСЛЕДВАНИЯ  ЗА ХРОНИЧНА  
ТОКСИЧНОСТ /КАНЦЕРОГЕННОСТ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
453 на ОИСР  (ОИСР  TG 453) (2009 г.). Първоначалното  Указание  за 
изпитване  453 е прието  през 1981 г. Разработването  на този преработен  
метод  Б.33 беше  счетено  за необходимо , за да бъдат  отразени  
последните  достижения  в областта  на хуманното  отношение  към 
животните  и нормативните  изисквания  (1) (2) (3) (4) (5). Акту­  
ализирането  на настоящия  метод  за изпитване  Б.33 е проведено  
успоредно  с преразглеждането  на глава  Б.32 („Изследвания  за 
канцерогенност “) и глава  Б.30 („Изследване  за хронична  токсичност “) 
от настоящото  приложение , с цел получаване  на допълнителна  
информация  от животните , използвани  в изследването , и предоставяне  
на допълнителна  подробна  информация  относно  избора  на доза. 
Настоящият  метод  за изпитване  е разработен  за използване  при 
изпитвания  на широк  кръг  от химикали , включително  пестициди  и 
промишлени  химикали . Следва  да се отбележи  обаче , че някои  
подробности  и изисквания  могат  да се различават  по отношение  на 
лекарствените  средства  [вж. Насока  S1B на Международната  
конференция  по хармонизация  (ICH) относно  изпитване  за 
канцерогенност  на фармацевтични  продукти ]. 
2. По-голямата  част от изследванията  за хронична  токсичност  и 
канцерогенност  се извършват  върху  различни  видове  гризачи  и следов­  
ателно  настоящият  метод  за изпитване  е предназначен  да се прилага  
основно  за изследвания , провеждани  върху  тези видове . Ако за такива  
изследвания  се изисква  използване  на видове , различни  от гризачи , 
описаните  принципи  и процедури , заедно  с тези, описани  в глава  
Б.27 от настоящото  приложение  („Изследване  на субхронична  орална  
токсичност  — 90-дневно  изследване  на токсичността  при не гризачи  с 
повтаряща  се доза“) (6), могат  също  така да се прилагат , с подходящи  
изменения , така както  са описани  в Ръководство  на ОИСР  № 116 за 
планиране  и провеждане  на изследвания  за хронична  токсичност  и за 
канцерогенност  (7). 
3. Трите  основни  пътя  на прилагане , използвани  при изследвания  за 
хронична  токсичност /канцерогенност , са орален , дермален  и инхалац­  
ионен . Изборът  на път на прилагане  зависи  от физичните  и химичните  
характеристики  на изпитвания  химикал  и от преобладаващия  път на 
експозиция  при хора . Допълнителна  информация  за избора  на път на 
експозиция  е представена  в Ръководство  № 116 (7).  
4. Настоящият  метод  за изпитване  е съсредоточен  върху  експозицията  по 
орален  път — най-често  използваният  път в изследванията  за хронична  
токсичност  и канцерогенност . Макар  че дългосрочни  изследвания , 
включващи  експозиция  по дермален  или инхалационен  път, могат  
също  да бъдат  необходими  за оценка  на риска  за човешкото  здраве  
и/или могат  да бъдат  изисквани  по силата  на някои  нормативни  
уредби , посочените  два пътя  на експозиция  са със значителна  техн­  
ическа  сложност . Такива  изследвания  трябва  да се планират  за всеки  
конкретен  случай , въпреки  че описаният  тук метод  за изпитване  за 
оценка  на хронична  токсичност  и канцерогенност  чрез прилагане  по 
орален  път би могъл  да послужи  за основа  на протокол  за изследвания , 
включващи  инхалационен  и/или дермален  път, по отношение  на 
препоръките  за периодите  за третиране , клиничните  параметри  и 
параметрите  на патологията , и други . Налични  са насоки  на ОИСР  за 
прилагане  на изпитвани  химикали  по инхалационен  (7) (8) и дермален  
път (7). Глава  Б.8 от настоящото  приложение  (9) и глава  Б.29 от 
настоящото  приложение  (10), заедно  с Ръководство  на ОИСР  за 
изпитване  за остра  инхалаторна  токсичност  (8), следва  специално  да 
бъдат  консултирани  при планирането  на по-дългосрочни  проучвания , 
включващи  експозиция  по инхалационен  път. Глава  В.9 от настоящото  
приложение  (11) следва  да бъде  консултирана  в случай  на изпитване , 
провеждано  по дермален  път. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 484
 
5. Комбинираното  изследване  за хронична  токсичност /канцерогенност  
предоставя  информация  за възможните  рискове  за здравето , прои­  
зтичащи  по всяка  вероятност  от повтаряща  се експозиция  за период , 
стигащ  до продължителността  на живота  на вида , който  се използва  
при изследването . Изследването  предоставя  информация  за токсичните  
ефекти  на изпитвания  химикал , включително  потенциална  
канцерогенност , посочва  прицелните  органи  и възможността  за акум­  
улиране . То може  да предостави  оценка  на нивото  без наблюдаван  
неблагоприятен  ефект  за токсични  ефекти  и — в случаите  с 
канцерогени , различни  от генотоксичните  — за туморни  отговори , 
което  може  да бъде  използвано  за установяване  на критерии  за безоп­  
асност  при експозиция  на хора . Набляга  се и върху  нуждата  от 
обстойни  клинични  наблюдения , правени  над животни  с цел да се 
получи  колкото  е възможно  повече  информация . 
6. Целите  на изследванията  за хронична  токсичност /канцерогенност , 
обхванати  от настоящия  метод  за изпитване , включват : 
— идентифициране  на канцерогенните  свойства  на даден  изпитван  
химикал , водещи  до по-честа  поява  на тумори , по-голям  
пропорционален  дял на злокачествените  тумори , или до намаляване  
на времето  за поява  на тумори  в сравнение  с паралелни  контролни  
групи , 
— идентифициране  на времето  за поява  на тумори , 
— идентифициране  на хроничната  токсичност  на изпитвания  химикал , 
— идентифициране  на прицелния (те) орган (и) за хроничната  токс­  
ичност  и канцерогенността , 
— характеризиране  на зависимостта  доза-отговор , 
— идентифициране  на нивото  без наблюдаван  неблагоприятен  
ефект  (NOAEL) или на отправната  точка  за установяване  на 
еталонна  доза (BMD),  
— екстраполация  на канцерогенните  ефекти  за експозиция  на човека  
при ниски  нива  на доза, 
— прогнозиране  на ефекти  на хронична  токсичност  при нива  на 
експозиция  на човека , 
— предоставяне  на данни  на изпитване  на хипотези  относно  начина  на 
действие  (2) (7) (12) (13) (14) (15).  
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
7. При оценката  на потенциалната  канцерогенност  и хронична  токсичност  
на даден  изпитван  химикал  цялата  достъпна  информация  за изпитвания  
химикал  следва  да бъде  разгледана  от лабораторията , извършваща  
изпитвания , преди  провеждането  на изследването , с цел да се 
съсредоточи  планът  на изследването  върху  по-ефикасно  изпитване  на 
неговите  токсикологични  свойства  и да се сведе  до минимум  
използването  на животни . Информацията  за и разглеждането  на 
начина  на действие  на предполагаемия  канцероген  (2) (7) (12) (13) 
(14) (15) е от особено  значение , тъй като оптималният  план  може  да 
се различава  в зависимост  от това дали  изпитваният  химикал  е известен  
или предполагаем  генотоксичен  канцероген . Допълнителни  насоки  
относно  разглеждането  на начина  на действие  могат  да бъдат  
намерени  в Ръководство  № 116 (7).  
8. Информация , която  ще помогне  за съставянето  на план  на 
изследването , включва  идентичност , химична  структура  и физични  и 
химични  свойства  на изпитвания  химикал ; всякаква  информация  за 
начина  на действие ; резултатите  от всякакви  извършени  in vitro  или 
in vivo  изпитвания  за токсичност , включително  изпитвания  за генот­  
оксичност ; очаквани  употреби  и потенциал  за експозиция  на човека ; 
налични  данни  за (количествена ) зависимост  структура -активност , 
мутагенност /генотоксичност , канцерогенност  и други  токсикологични  
данни  за химикали  със сходна  структура ; достъпни  токсикокинетични  
данни  (данни  за кинетика  на еднократна , а също  и на повтаряща  се 
доза, където  са достъпни ) и данни , получени  от други  изследвания  с 
повтаряща  се експозиция . Определянето  на хроничната  токсичност /ка­ 
нцерогенността  трябва  да се извършва  само  след  получаване  на ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 485
 
първоначална  информация  относно  токсичността  от 28-дневно  и/или 
90-дневно  изпитвания  за токсичност  при повтаряща  се доза. Крат­  
косрочни  изпитвания  за зараждане  и размножение  на ракови  клетки  
също  така биха  могли  да предоставят  полезна  информация . Поетапният  
подход  за изпитван e за канцерогенност  следва  да се разглежда  като 
част от цялостната  оценка  на възможните  неблагоприятни  въздействия  
на даден  изпитван  химикал  върху  здравето  (16) (17) (18) (19).  
9. Статистическите  методи , които  са най-подходящи  за анализ  на резулт­  
атите , като се имат  предвид  планът  на изследването  и целите , следва  да 
бъдат  определени  преди  началото  на изследването . Въпроси  за разг­  
леждане  включват  дали  статистиката  следва  да включва  корекция  за 
преживяемост , анализ  на кумулативни  рискове  от тумори , свързани  с 
продължителността  на преживяемостта , анализ  на времето  до 
образуване  на тумора  и анализ  в случай  на преждевременно  
прекратяване  на използването  на една  или повече  групи . Насоки  
относно  подходящите  статистически  анализи  и ключови  препратки  
към международно  приети  статистически  методи  са дадени  в Ръко­  
водство  № 116 (7), също  и в Ръководство  № 35 за анализ  и оценка  
на изследвания  за хронична  токсичност  и канцерогенност  (20).  
10. При провеждане  на изследването  за канцерогенност  ръководните  
принципи  и съображенията , формулирани  в Ръководството  на ОИСР  
относно  признаването , оценяването  и използването  на клинични  
признаци  като хуманен  край  за опитни  животни , използвани  за 
оценка  на безопасността  (21), и по-специално  точка  62 от него , 
следва  винаги  да бъдат  спазвани . В тази точка  е посочено , че „при 
изследвания , включващи  прилагане  на повтарящи  се дози , когато  
дадено  животно  показва  клинични  признаци , които  са прогресивни , 
водещи  до по-нататъшно  влошаване  на състоянието , следва  да се 
вземе  информирано  решение  дали  да се разреши  или не животното  
да бъде  умъртвено  по хуманен  начин . Решението  следва  да включва  
съображение  относно  стойността  на информацията , която  ще бъде  
получена  от продължаване  на изследването  с даденото  животно  във 
връзка  с общото  му състояние . Ако се вземе  решение  за продължаване  
на изпитването  с животното , честотата  на наблюденията  трябва  
да се увеличи  доколкото  е необходимо . Би било  възможно  също  така , 
без да се засяга  неблагоприятно  целта  на изпитването , временно  да 
бъде  преустановено  дозирането , ако това  ще допринесе  за премахване  
на болката  или дистреса , или да бъде  намалена  дозата  на изпитва­  
нето .“ 
11. Подробни  насоки  относно  и обсъждане  на принципите  на избора  на 
доза за изследванията  за хронична  токсичност  и канцерогенност  могат  
да бъдат  намерени  в Ръководство  № 116 (7), както  и в две публикации  
на Международния  институт  за науките  за живота  (22) (23). Основната  
стратегия  за избор  на доза зависи  от основната  цел или цели  на 
изследването  (точка  6). При избора  на подходящи  нива  на доза 
следва  да се постигне  равновесие  между  скрининга  за опасност , от 
една  страна , и характеризирането  на отговорите  на ниски  дози  и 
тяхната  уместност , от друга  страна . Това  е от особено  значение  в 
случая  на настоящото  комбинирано  изследване  за хронична  токсичност  
и за канцерогенност . 
12. Следва  да се разгледа  възможността  за провеждане  на настоящото  
комбинирано  изследване  за хронична  токсичност  и канцерогенност , 
вместо  отделно  провеждане  на изследване  за хронична  токсичност  
(глава  Б.30 от настоящото  приложение ) и на изследване  за 
канцерогенност  (глава  Б.32 от настоящото  приложение ). 
Комбинираното  изпитване  осигурява  по-голяма  ефикасност  по 
отношение  на време  и разходи  и известно  намаляване  на използването  
на животни  в сравнение  с провеждането  на две отделни  изследвания , 
без да се прави  компромис  с качеството  на данните  нито  във фазата  на 
изпитване  за хронична  токсичност , нито  във фазата  за канцероген­  
ността . Следва  обаче  да се обърне  внимание  на принципите  на 
избора  на доза (точка  11 и 22—26), когато  се предприема  комбинирано  
изследване  за хронична  токсичност  и канцерогенност , и също  така се 
признава , че по някои  нормативни  уредби  може  да се изискват  отделни  
изследвания . Допълнителни  насоки  за планирането  на комбинирано  
изследване  за хронична  токсичност  и канцерогенност , за да се 
постигне  максимална  ефикасност  на изследването  както  по 
отношение  на възможностите  за намаляване  на броя  на използваните  
животни , така и чрез рационализиране  на различните  опитни  
процедури , могат  да бъдат  намерени  в Ръководство  № 116 (7).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 486
 
13. Определенията , използвани  в контекста  на настоящия  метод  за 
изпитване , са дадени  в края  на тази глава  и в Ръководство  № 116 (7).  
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
14. Планът  на изследването  се състои  от две успоредни  фази  — фаза  за 
хронична  токсичност  и фаза  за канцерогенност  (за продължителността  
им вж. съответно  точка  34 и 35). Изпитваният  химикал  обикновено  се 
прилага  по орален  път, въпреки  че изпитването  по инхалаторен  или 
дермален  път може  също  да е подходящо . Във фазата  за хронична  
токсичност  изпитваният  химикал  се прилага  ежедневно , в постепенно  
нарастващи  дози , на няколко  групи  изпитвани  животни , по едно  ниво  
на доза за група , обикновено  за срок  от 12 месеца , въпреки  че по-дълги  
или по-кратки  продължителности  също  могат  да бъдат  избрани  в 
зависимост  от нормативните  изисквания  (вж. точка  34). Тази  продълж­  
ителност  е избрана  да бъде  достатъчно  дълга , за да позволи  проявяване  
на всякакви  ефекти  от кумулативна  токсичност  без водещите  до невъ­  
зможност  за разграничаване  ефекти , внасяни  от старчески  изменения . 
Планът  на изследването  може  също  да включва  едно  или повече  
междинни  умъртвявания , например  на 3 и 6 месеца , като могат  да 
бъдат  включени  допълнителни  групи  животни  за да се съобрази  това 
(вж. точка  20). Във фазата  за канцерогенност  изпитваният  химикал  се 
прилага  ежедневно  на няколко  групи  изпитвани  животни  за по- 
голямата  част от живота  им. Животните  в двете  фази  се наблюдават  
отблизо  за признаци  на токсичност  и за развитието  на отнасящи  се до 
новообразувания  увреждания . Животните , които  умират  или са 
умъртвени  по време  на изпитването , се аутопсират , а преживелите  
животни  се умъртвяват  и се аутопсират  при приключването  на 
изпитването . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
15. Настоящият  метод  за изпитване  основно  обхваща  оценка  на хроничната  
токсичност  и канцерогенността  при гризачи  (точка  2). Използването  на 
видове , различни  от гризачи , може  да бъде  разгледано , когато  
наличните  данни  показват , че те са по-подходящи  за прогнозиране  на 
последиците  за здравето  на човека . Изборът  на вида  следва  да се 
обоснове . Предпочитаният  вид гризач  е плъхът , въпреки  че могат  да 
се използват  и други  видове  от гризачи , например  мишки . Въпреки  че 
използването  на мишки  в провеждането  на изпитвания  за 
канцерогенност  може  да има ограничена  полезност  (24) (25) (26), при 
някои  настоящи  регулаторни  програми  все още се изисква  изпитване  за 
канцерогенност  при мишки , освен  ако се установи , че подобно  
проучване  не е необходимо  от научна  гледна  точка . Плъховете  и 
мишките  са предпочитани  опитни  модели  поради  тяхната  относително  
кратка  продължителност  на живота , широкото  им използване  при 
фармакологични  и токсикологични  изследвания , тяхната  склонност  
към образуване  на тумори , както  и наличието  на достатъчно  
характеризирани  породи . В резултат  на тези характеристики  е 
налично  голямо  количество  информация  относно  тяхната  физиология  
и патология . Планирането  и провеждането , при необходимост , на 
изследвания  за хронична  токсичност /канцерогенност  върху  видове , 
различни  от гризачи , следва  да се основава  на принципите , описани  в 
настоящия  метод  за изпитване  заедно  с тези от глава  Б.27 от 
настоящото  приложение  („Изследване  на субхронична  орална  токс­  
ичност  — 90-дневно  изследване  на токсичността  при не гризачи  с 
повтаряща  се доза“) (6). Допълнителна  информация  за избора  на вид 
и порода  е представена  в Ръководство  № 116 (7).  
16. Следва  да се използват  здрави  млади  полово  зрели  животни  от 
обичайно  използваните  за лабораторни  изследвания  породи . 
Комбинираното  изследване  за хронична  токсичност /канцерогенност  
трябва  да се провежда  върху  животни  от една  и съща  порода  и 
източник  като тези, които  са използвани  при предварителното (ите) 
изследване (ия) за токсичност  с по-малка  продължителност , но ако за 
животни  от тази порода  и източник  е известно , че могат  да причинят  
проблеми  при постигането  на обичайно  признатите  критерии  за 
преживяемост  при дългосрочни  изследвания  [вж. Ръководство  № 116 
(7)], следва  да се разгледа  възможността  за използването  на порода  на 
животно , която  има приемлив  процент  на преживяемост  за 
дългосрочното  изследване . Женските  индивиди  следва  да не са 
раждали  и да не са бременни . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 487
 
Условия  на отглеждане  и хранене  
17. Животните  могат  да бъдат  настанени  в клетките  индивидуално  или на 
малки  групи  от един  и същ пол; индивидуалното  настаняване  следва  да 
се разглежда  само  ако е научно  обосновано  (27) (28) (29). Клетките  
трябва  да бъдат  подредени  по такъв  начин , че възможните  ефекти  в 
резултат  на местоположението  на клетката  да бъдат  сведени  до 
минимум . Температурата  в стаята  на опитните  животни  трябва  да 
бъде  22 °C (± 3 °C). Въпреки  че относителната  влажност  трябва  да е 
най-малко  30 % и за предпочитане  да не превишава  70 %, освен  по 
време  на почистване  на помещението , целта  следва  да е 50—60 %. 
Осветлението  следва  да бъде  изкуствено , като последователността  е 
12 часа светлина , 12 часа тъмнина . За храненето  могат  да се 
използват  обичайните  лабораторни  хранителни  режими  с неограничен  
достъп  до вода  за пиене . Хранителният  режим  следва  да отговаря  на 
всички  изисквания  към храната  за съответния  изпитван  вид, а 
съдържанието  в храната  на замърсители , включващи , но без да се 
ограничават  до остатъци  от пестициди , устойчиви  органични  
замърсители , фитоестрогени , тежки  метали  и микотоксини , които  
биха  могли  да окажат  въздействие  върху  резултата  от изпитването , 
трябва  да е възможно  най-ниско . Следва  периодично  да се генерира  
аналитична  информация  относно  равнищата  на хранителните  вещества  
и замърсителите  в хранителния  режим , най-малко  в началото  на 
изследването  и когато  има промяна  в използваната  партида , и същата  
следва  да бъде  включена  в окончателния  доклад . По подобен  начин  
следва  да бъде  предоставена  аналитична  информация  за питейната  
вода , използвана  в изследването . Изборът  на хранителен  режим  може  
да бъде  повлиян  от необходимостта  да се осигури  подходящо  смесване  
с изпитвания  химикал  и да бъдат  изпълнени  изискванията  за хранене  на 
животните , когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранителния  
режим . 
Подготовка  на животните  
18. Следва  да се използват  здрави  животни , които  предварително  са се 
аклиматизирали  към лабораторните  условия  в продължение  най-малко  
на 7 дни и върху  които  не са извършвани  предходни  опитни  
процедури . При гризачите  дозирането  на животните  следва  да 
започне  колкото  е възможно  по-скоро  след  отбиването  и аклиматиз­  
ацията  и, за предпочитане , преди  животните  да навършат  8 седмици . 
Опитните  животни  трябва  да се опишат  по отношение  на вид, порода , 
източник  за доставка , пол, телесно  тегло  и възраст . При започване  на 
изследването  колебанието  на индивидуалните  стойности  на телесното  
тегло  на използваните  животни  трябва  да бъде  минимално  и да не 
превишава  ± 20 % от средното  тегло  на всички  животни  от същия  
пол в рамките  на изследването . Животните  се разпределят  на случаен  
принцип  в контролни  групи  и групи  за третиране . След  прилагането  на 
подбора  на случаен  принцип  следва  да няма  значителни  разлики  между  
средните  стойности  на телесното  тегло  в отделните  групи  в рамките  на 
съответния  пол. Ако съществуват  статистически  значими  разлики , 
тогава  стъпката  по подбор  на случаен  принцип  трябва  да се повтори , 
ако е възможно . За всяко  животно  се определя  уникален  идентифик­  
ационен  номер  и му се поставя  постоянна  маркировка  с този номер  
чрез поставяне  на татуировка , имплантиране  на микрочип  или чрез 
друг  подходящ  метод . 
ПРОЦЕДУРА  
Брой  и пол на животните  
19. Следва  да се използват  и двата  пола . Трябва  да се използва  брой  
животни , който  е достатъчен  да направи  възможно  извършването  на 
задълбочена  биологична  и статистическа  оценка . За гризачи  всяка  
група  с определена  доза (както  е посочено  в точка  22) и паралелна  
контролна  група , планирани  за използване  във фазата  за 
канцерогенност  от изследването , трябва  следователно  да се състои  от 
най-малко  50 животни  от всеки  пол. В зависимост  от целта  на 
изследването  може  да бъде  възможно  увеличаване  на статистическата  
мощност  на ключовите  оценки  чрез диференцирано  неравномерно  
разпределяне  на животни  по групите  с различни  дози , с повече  от 50 
животни  в групите  с ниски  дози , например , за определяне  на 
канцерогенен  потенциал  при ниски  дози . Следва  да се признае  обаче , 
че умерено  увеличение  на размера  на групата  ще доведе  до относ­  
ително  слабо  нарастване  на статистическата  мощност  на изследването . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 488
 
За гризачи  всяка  група  с определена  доза (както  е посочено  в точка  22) 
и паралелна  контролна  група , планирани  за използване  във фазата  за 
хронична  токсичност  от изследването , трябва  да се състои  от най-малко  
10 животни  от всеки  пол. Следва  да се отбележи , че този брой  е по- 
малък  от броя  в изследването  за хронична  токсичност  (глава  Б.30 от 
настоящото  приложение ). Интерпретирането  на данните  от намаления  
брой  животни  в група  във фазата  за хронична  токсичност  на това 
комбинирано  изследване  обаче  ще бъде  подпомогнато  с данните  от 
по-големия  брой  животни  във фазата  за канцерогенност  от 
изследването . При изследвания , включващи  мишки , могат  да бъдат  
необходими  допълнителни  животни  във всяка  група  с определена  
доза във фазата  за хронична  токсичност , за извършване  на всички  
изисквани  хематологични  определяния . Допълнителна  информация  
относно  статистическия  план  на изследването  и избора  на нива  на 
доза за максимизиране  на статистическата  мощност  се дава в Ръко­  
водство  № 116 (7).  
Планиране  на междинни  умъртвявания , сателитни  групи  и 
животни  от индикаторна  група  
20. Изследването  може  да предвижда  междинни  умъртвявания , например  
на 6 месеца  във фазата  за хронична  токсичност , за предоставяне  на 
информация  за напредването  на изменения , които  не се отнасят  се до 
новообразувания , и механистична  информация , ако е научно  обос­  
новано . Когато  такава  информация  вече е достъпна  от предходни  
изследвания  на изпитвания  химикал  за токсичност  при повтарящи  се 
дози , възможно  е междинните  умъртвявания  да не са научно  обос­  
новани . Животните , използвани  във фазата  за хронична  токсичност  от 
изследването , обикновено  с продължителност  от 12 месеца  (точка  34), 
предоставят  данни  от междинно  умъртвяване  за фазата  за 
канцерогенност  от изследването , като по този начин  се постига  
намаляване  на броя  на животните , използвани  като цяло . Във фазата  
за хронична  токсичност  от изследването  могат  да бъдат  включени  също  
и сателитни  групи , за мониторинг  на обратимостта  на всякакви  токс­  
икологични  промени , причинени  от изпитвания  химикал , който  е 
предмет  на проучването . Те могат  да бъдат  ограничени  до най- 
високото  ниво  на доза за изследването , плюс  контрол . Допълнителна  
индикаторна  група  от животни  (обикновено  по 5 животни  от всеки  от 
двата  пола ) може  да бъде  включена , за мониторинг  на здравния  статус  
по време  на изследването , ако е необходимо  (30). Допълнителни  насоки  
относно  планирането  на изследването  за вклюване  на междинни  
умъртвявания , животни  в сателитни  и индикаторни  групи , като в 
същото  време  се сведе  до минимум  броят  на животни , използвани  
като цяло , са дадени  в Ръководство  № 116 (7).  
21. Ако в плана  на изследването  са включени  сателитни  групи  и/или 
междинни  умъртвявания , броят  на животните  във всяка  група  с 
определена  доза, определени  за тази цел, обичайно  е 10 животни  от 
пол, и общият  брой  животни , включени  в плана  на изследването , 
трябва  да бъде  увеличен  с броя  животни , които  са планирани  за 
междинно  умъртвяване  преди  приключването  на изследването . 
Животните  за междинни  умъртвявания  и от сателитни  групи  по 
принцип  трябва  да преминат  през същите  наблюдения , както  
животните  във фаза  хронична  токсичност  на основното  изследване , 
включително  телесно  тегло , консумация  на храна /вода , хематологични  
и клинични  биохимични  измервания  и проучване  на патологията , 
въпреки  че също  така може  да се постанови  (в групите  за междинно  
умъртвяване ) измерванията  да се ограничат  до специфични  ключови  
измервания  като невротоксичност  или имунотоксичност . 
Групи  с определени  дози  и дозиране  
22. Насоки  по всички  аспекти  на избора  на доза и интервалите  между  
нивата  на доза са предоставени  в Ръководство  № 116 (7). Следва  да 
се използват  най-малко  три нива  на доза и паралелен  контрол  и за 
двете  фази  — за хронична  токсичност  и за канцерогенност . Нивата  
на доза обичайно  са основани  на резултатите  от по-краткосрочни  
изследвания  при повтаряща  се доза, или на изследвания  за определяне  
на обхвата , и следва  да са съобразени  с всякакви  достъпни  токсик­  
ологични  и токсикокинетични  данни  за изпитвания  химикал  или за 
свързани  с него  химикали . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 489
 
23. За фазата  за хронична  токсичност  от изследването  цялостно  изследване  
с използване  на три нива  на доза може  да не се счита  за необходимо , 
ако може  да се очаква , че в изпитване  с едно  ниво  на доза, равностойно  
на най-малко  1 000 mg на kg телесно  тегло  дневно , е малко  вероятно  да 
предизвика  вредни  ефекти . Това  следва  да се основава  на информация  
от предварителни  изследвания  и на заключение , че не може  да се 
очаква  токсичност  въз основа  на данни  от структурно  свързани  
химикали . Като  горна  граница  може  да се приложи  1 000 mg на kg 
телесно  тегло  на ден, с изключение  на случаите , при които  експозиция  
на хора  подсказва  нуждата  от използване  на по-високо  ниво  на доза. 
24. Освен  ако не е ограничено  от физичното  или химичното  естество , или 
от биологичните  ефекти  на изпитвания  химикал , най-високото  ниво  на 
доза следва  да се избере  така, че да се установят  основните  прицелни  
органи  и токсични  ефекти , като същевременно  се избягва  страдание , 
силна  токсичност , заболяемост  или смърт . Най-високото  ниво  на доза 
трябва  по принцип  да бъде  избирано  така, че да бъдат  получени  дока­  
зателства  за токсичност , както  се доказва , например , чрез подтискане  
наддаването  на тегло  (около  10 %). Въпреки  това, в зависимост  от 
целите  на изследването  (вж. точка  6), може  да бъде  избрана  макс­  
имална  доза, която  да е по-ниска  от дозата , доказваща  наличието  на 
токсичност , например , ако при дадена  доза се проявява  неблагоприятен  
ефект , който  дава повод  за загриженост , но който  има незначително  
влияние  върху  продължителността  на живота  или телесното  тегло . 
25. Нивата  на доза и интервалите  между  тях могат  да бъдат  избрани  така, 
че да бъдат  установени  зависимостта  доза-отговор  и — в зависимост  от 
начина  на действие  на изпитвания  химикал  — NOAEL или други  
очаквани  резултати  от изследването , например  BMD (вж. точка  27). 
Фактори , които  следва  да бъдат  разгледани  при поставянето  на по- 
ниски  дози , включват  очаквания  наклон  на кривата  доза-отговор , 
дозите , при които  могат  да настъпят  важни  промени  в метаболизма  
или в начина  на токсично  действие , когато  се очаква  праг , или 
когато  се очаква  отправна  точка  за екстраполиране  на ниски  дози . 
При провеждането  на комбинирано  изпитване  за хронична  токсичност / 
канцерогенност  основната  цел е да се получи  информация  за оценката  
на риска  от канцерогенност , като информацията  за хроничната  токс­  
ичност  обичайно  е спомагателна  цел. Това  следва  да се има предвид  
при определянето  на нивата  на доза и интервалите  между  тях за 
изследването . 
26. Избраните  интервали  между  нивата  на доза зависят  от целите  на 
изследването  и от характеристиките  на изпитвания  химикал  и не 
могат  да бъдат  подробно  предписани  в настоящия  метод  за изпитване , 
но от двукратни  до четирикратни  интервали  често  дават  добри  
параметри  на изпитването , когато  се използват  за определяне  на 
намаляващите  нива  на доза, и добавянето  на четвърта  група  за 
изпитване  често  се предпочита  пред  използване  на големи  интервали  
(например  с кратност , надвишаваща  6—10 пъти ) между  дозирането . По 
принцип  използване  на кратност  над 10 следва  да се избягва  и, ако се 
използва , следва  да бъде  обосновано . 
27. Както  е допълнително  разгледано  в Ръководство  № 116 (7), точки , 
които  трябва  да бъдат  взети  предвид  при избора  на доза, включват : 
— познати  или предполагаеми  нелинейни  зависимости  или инфлексни  
точки  в зависимостта  доза-отговор , 
— токсикокинетика  и обхвати  на дозиране , при които  се получава , или 
не се получава , метаболитна  индукция , насищане  или нелинейна  
зависимост  между  външни  и вътрешни  дози , 
— увреждания -прекурсори , маркери  на ефект  или показатели  за 
протичане  в дълбочина  на ключови  биологични  процеси , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 490
 
— ключови  (или предполагаеми ) аспекти  на начина  на действие , като 
например  дози , при които  започва  да се проявява  цитотоксичност , 
появяват  се нарушения  в хормоналните  равнища  и механизмите  на 
хомеостазата , и др., 
— области  от кривата  доза-отговор , в които  е необходима  особено  
устойчива  оценка , напр . в обхвата  на очакваната  BMD или предп­  
олагаем  праг , 
— съобразяване  на предполагаеми  нива  на експозиция  на човека , 
особено  при избора  на средни  и ниски  дози . 
28. Контролната  група  не се третира  или е контролна  група  за носителя  в 
случаите , когато  за въвеждането  на изпитвания  химикал  се използва  
носител . С изключение  на самата  обработка  с изпитвания  химикал , 
животните  в контролната  група  следва  да се третират  по същия  
начин  като тези от групите  за изпитване . Когато  се използва  носител , 
животните  от контролната  група  се третират  с най-големия  обем  
носител  измежду  обемите , при които  се третират  групите  на дози . 
Ако изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранителен  режим  и 
причинява  значително  намаляване  на приема  на храна  поради  
понижени  вкусови  качества  на хранителния  режим , може  да бъде  
полезна  допълнителна  контролна  група , получаваща  същото  количество  
храна , която  да служи  като по-подходяща  контрола . 
Приготвяне  на дозите  и прилагане  на изпитвания  химикал  
29. Изпитваният  химикал  обичайно  се прилага  през устата , чрез 
хранителния  режим  или питейната  вода , или чрез хранене  през сонда . 
Допълнителна  информация  за пътища  и начини  на прилагане  е 
представена  в Ръководство  № 116 (7). Пътят  и начинът  на прилагане  
зависят  от целта  на изследването , физичните  и химичните  свойства  на 
изпитвания  химикал , неговата  биодостъпност  и преобладаващия  път и 
начин  на експозиция  на хора . Следва  да се представи  обосновка  за 
избрания  път и начин  на прилагане . С оглед  на хуманното  
отношение  към животните , храненето  по орален  път през сонда  по 
принцип  следва  да се избира  само  за онези  агенти , за които  този път 
и начин  на прилагане  е в разумна  степен  представителен  за потенци­  
алната  експозиция  на хора  (напр . фармацевтични  продукти ). За 
химикали , свързани  с хранителния  режим  или с околната  среда , включ­  
ително  пестициди , прилагането  е обичайно  чрез хранителния  режим  
или чрез питейната  вода . Въпреки  това, при някои  сценарии , напр . 
професионална  експозиция , прилагане  по други  пътища  може  да бъде  
по-подходящо . 
30. Когато  е необходимо , изпитваният  химикал  е в разтвор  или в суспензия  
в подходящ  носител . Трябва  да бъдат  разгледани  следните  
характеристики  на носителя  и, съответно , други  добавки : ефекти  
върху  абсорбцията , разпределението , метаболизма  или задържането  на 
изпитвания  химикал ; ефекти  върху  химичните  свойства  на изпитвания  
химикал , които  могат  да изменят  токсикологичните  му характеристики ; 
и ефектите  върху  консумирането  на храна  или вода , или хранителния  
статус  на животните . Препоръчва  се, когато  е възможно , най-напред  да 
се прецени  дали  може  се използва  воден  разтвор /суспензия , след  това 
— разтвор /емулсия  в масло  (напр . царевично  олио ), а след  това — 
разтваряне  в други  носители . Когато  се използват  други  носители  
освен  водата , трябва  да се познават  токсикологичните  свойства  на 
носителя . Следва  да е достъпна  информация  относно  стабилността  на 
изпитвания  химикал  и хомогенността  на разтворите  за дозиране  или на 
храната  (в зависимост  от случая ) при условията  на прилагане  (напр . 
чрез хранителен  режим ). 
31. За химикали , които  се прилагат  чрез хранителен  режим  или вода  за 
пиене , е важно  да се гарантира , че количеството  изпитван  химикал  не 
въздейства  върху  нормалното  хранене  и водния  баланс . При 
дългосрочни  изследвания  за токсичност  с прилагане  чрез хранителния  
режим  концентрацията  на изпитвания  химикал  в храната  по принцип  
не трябва  да надвишава  горна  граница  от 5 % от общото  количество  
храна , с цел да се избегне  небалансирано  хранене . Когато  изпитваният  
химикал  се прилага  с храната , може  да се използва  или постоянна  
концентрация  в храната  (mg/kg храна  или ppm), или постоянно  ниво  
на доза от гледна  точка  на телесното  тегло  на животното  (mg на kg 
телесно  тегло ), изчислявани  на седмична  основа . Използваната  
алтернатива  трябва  да бъде  посочена . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 491
 
32. В случай  на прилагане  по орален  път дозата  изпитван  химикал  се дава 
на животните  ежедневно  (седем  дни в седмицата ) за период  от 12 
месеца  (фаза  за хронична  токсичност ) или 24 месеца  (фаза  за 
канцерогенност ) (вж. също  точка  33 и 34). Необходимо  е да се 
обосноват  причините  за използването  на всякакъв  друг  режим  на 
дозиране , например  пет дни в седмицата . В случай  на прилагане  по 
дермален  път животните  обичайно  са третирани  с изпитвания  химикал  
в продължение  на най-малко  6 часа в денонощието , 7 дни в седмицата , 
както  е определено  в глава  Б.9 от настоящото  приложение  (11), за 
период  от 12 месеца  (фаза  за хронична  токсичност ) или 24 месеца  
(фаза  за канцерогенност ). Експозицията  по инхалаторен  път се 
извършва  в продължение  на 6 часа в денонощието , 7 дни в седмицата , 
но експозиция  за 5 дни седмично  също  може  да бъде  прилагана , ако е 
обоснована . Продължителността  на експозицията  по принцип  е 12 
месеца  (фаза  за хронична  токсичност ) или 24 месеца  (фаза  за 
канцерогенност ). Ако експозиция  на вид гризач , различен  от плъх , е 
само  през носа , максималната  продължителност  на експозицията  може  
да бъде  адаптирана  така, че да се минимизира  специфичният  за този 
вид дистрес . Трябва  да бъде  предоставена  обосновка  при използване  на 
продължителност  на експозицията  по-малка  от 6 часа дневно . Вж. също  
глава  Б.8 от настоящото  приложение  (9). 
33. Когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез сонда  на животните , това 
следва  да се извърши  посредством  стомашна  тръбичка  или подходяща  
канюла  за интубация , по едно  и също  време  всеки  ден. Обикновено  
еднократната  доза се прилага  веднъж  дневно , но когато  например  даден  
химикал  е местен  дразнител , може  да е възможно  поддържането  на 
ежедневната  доза да се извършва  чрез прилагането  ѝ като разделена  
доза (два пъти  дневно ). Максималният  обем  течност , който  може  да 
бъде  въведен  еднократно , зависи  от телесното  тегло  на изпитваното  
животно . Обемът  следва  да се запазва  възможно  най-нисък  и по 
принцип  не следва  да надхвърля  1 ml/100 g телесно  тегло  за гризачи  
(31). Варирането  на обема  за изпитването  следва  да бъде  сведено  до 
минимум  чрез настройване  на концентрацията  така, че да се осигури  
постоянен  обем  при всички  нива  на доза. Потенциално  корозивните  
или дразнещи  химикали  са изключение  и трябва  да бъдат  разредени , 
за да се избегнат  силни  локални  ефекти . Изпитването  при конце­  
нтрации , за които  съществува  вероятност  да причиняват  корозивно  
или дразнещо  действие  върху  стомашно -чревния  тракт , следва  да се 
избягва . 
Продължителност  на изследването  
34. Периодът  на дозирането  и продължителността  на фазата  за хронична  
токсичност  при това изследване  обичайно  е 12 месеца , като планът  на 
изследването  допуска  също  така, и може  да бъде  прилаган  или за 
изследвания  с по-малка  продължителност  (напр . 6 или 9 месеца ), или 
за такива  с по-голяма  (напр . 18 или 24 месеца ), в зависимост  от изис­  
кванията  на специфичната  нормативна  уредба  или за конкретни  меха­  
нистични  цели . Отклоненията  от продължителността  на експозиция  от 
12 месеца  трябва  да бъдат  обосновани , особено  в случаите  с по-кратка  
продължителност . Животните  от всички  групи  с определена  доза, 
разпределени  към тази фаза , се умъртвяват  в определеното  време  за 
оценка  на хроничната  токсичност  и патологията , която  не се отнася  до 
новообразувания . Сателитните  групи , включени  за мониторинг  на 
обратимостта  на всякакви  токсикологични  промени , индуцирани  от 
изпитвания  химикал , предмет  на проучването , следва  да бъдат  
оставени  без дозиране  за период  не по-кратък  от 4 седмици  и не по- 
дълъг  от една  трета  от общата  продължителност  на изследването  след  
приключването  на експозицията . 
35. Продължителността  на фазата  за канцерогенност  от това изследване  
обичайно  е 24 месеца  за гризачи , представляващи  по-голямата  част 
от нормалната  продължителност  на живота  на животните , които  ще 
бъдат  използвани . По-дълги  или по-кратки  продължителности  на 
изследване  могат  да бъдат  използвани , в зависимост  от продължит­  
елността  на живота  на породата  от изследвания  животински  вид, но 
следва  да бъдат  обосновани . За конкретни  породи  мишки , напр . AKR/J, 
C3H/J или C57BL/6J, продължителност  от 18 месеца  може  да е по- 
подходяща . Следното  също  така предоставя  някои  насоки  относно  
продължителността , прекратяването  на изследването  и преживяемостта ; 
допълнителни  насоки , включително  разглеждане  на приемливостта  на 
отрицателен  резултат  от изпитване  за канцерогенност , свързан  с 
преживяемостта  в изследването , са предоставени  в Ръководство  
№ 116 (7):  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 492
 
— Следва  да се разгледа  възможност  за прекратяване  на изследването , 
когато  броят  на преживелите  животни  в групите  на по-ниски  дози  
или в контролната  група  спадне  под 25 процента . 
— В случая , когато  само  животните  от групата  с висока  доза умират  
преждевременно  поради  токсичност , това не следва  да води  до 
прекратяване  на изследването . 
— Преживяването  на всеки  от двата  пола  трябва  да се разглежда  
отделно . 
— Изследването  не следва  да бъде  продължавано  отвъд  точката , в 
която  достъпните  данни  от изследването  вече не са достатъчни  за 
даване  на възможност  за извършване  на статистически  обоснована  
оценка . 
НАБЛЮДЕНИЯ  (ФАЗА  ЗА ХРОНИЧНА  ТОКСИЧНОСТ ) 
36. Всички  животни  трябва  да бъдат  проверени  за заболяемост  или 
смъртност , обикновено  в началото  и в края  на всеки  ден, включително  
в съботни  и неделни  дни и празници . Поне  един  път на ден се правят  
общи  клинични  наблюдения , за предпочитане  по едно  и също  време , 
като се взема  предвид  периодът  с пикови  стойности  на очакваните  
въздействия  след  получаване  на дозата  в случаите  на прилагане  чрез 
хранене  през сонда . 
37. Следва  да се провеждат  подробни  клинични  наблюдения  на всички  
животни  най-малко  веднъж  преди  първата  експозиция  (за да се даде  
възможност  за интрасубектни  сравнения ), в края  на първата  седмица  на 
изследването  и месечно  след  това. Протоколът  от наблюденията  трябва  
да бъде  изготвен  така, че колебанията  на стойностите  между  
извършващите  наблюденията  да са сведени  до минимум  и да са 
независими  от изпитваната  група . Тези  наблюдения  следва  да се 
правят  извън  клетката , която  обитава  животното , за предпочитане  в 
стандартна  обстановка  и във всички  случаи  по едно  и също  време . 
Тези  наблюдения  следва  да се описват  внимателно , за предпочитане  с 
използване  на точкови  системи , изрично  определени  от лабораторията , 
извършваща  изпитвания . Трябва  да бъде  направено  усилие  да се 
осигурят  минимални  колебания  в условията  за наблюдение . 
Отбелязваните  симптоми  следва  да включват , без да се ограничат  
само  до промяна  в кожата , козината , очите , лигавиците , поява  на 
секреция  и екскреция , както  и автономна  активност  (напр . сълзене , 
пилоерекция , промяна  в големината  на зениците , необичаен  начин  на 
дишане ). Следва  да се записват  също  и изменения  в походката , 
стойката  и реакцията  при боравене , както  и наличието  на клонични  
или тонични  движения , стереотипно  (например  прекомерно  
поддържане  на външния  вид, повтарящо  се обикаляне  в кръг ) или 
необичайно  поведение  (например  самоосакатяване , вървене  назад ) (32).  
38. Преди  първото  прилагане  на изпитвания  химикал  на всички  животни  
следва  да бъдат  извършени  офталмологични  изследвания  с използване  
на офталмоскоп  или друго  подходящо  устройство . За предпочитане  е, 
при прекратяване  на изследването , това изследване  да се проведе  върху  
всички  животни , но най-малко  върху  групите , експонирани  на високата  
доза, и върху  контролните  групи . Ако се открият  свързани  с 
третирането  изменения  в очите , всички  животни  трябва  да бъдат  
изследвани . Ако от структурен  анализ  или от друга  информация  се 
предполага  токсичност  за очите , тогава  честотата  на изследванията  на 
очите  следва  да бъде  увеличена . 
39. За химикали , за които  в предходни  28-дневни  и/или 90-дневни  
изпитвания  за токсичност  с повтаряща  се доза има показания  за 
потенциал  за предизвикване  на невротоксични  ефекти , като опция  
сензорната  реактивност  към различни  видове  стимули  (32) (напр . 
слухови , зрителни  и проприоцептивни ) (33) (34) (35), оценката  на 
силата  на захвата  (36) и на двигателната  активност  (37) могат  да 
бъдат  извършени  преди  започването  на изследването  и на 3-месечни  
периоди  след  началото  на изследването , включително  до изтичане  на 
12 месеца , както  и при прекратяване  на изследването  (ако продължит­  
елността  му е над 12 месеца ). Допълнителни  уточнения  по 
процедурите , които  могат  да бъдат  следвани , са дадени  в съответните  
препратки . Въпреки  всичко  могат  да се използват  и алтернативни  
процедури , различни  от тези, към които  се препраща . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 493
 
40. За химикали , за които  в предходни  28-дневни  и/или 90-дневни  
изпитвания  за токсичност  с повтаряща  се доза има показания  за 
потенциал  за предизвикване  на имунотоксични  ефекти , като опция  
по-нататъшни  проучвания  на тази крайна  точка  могат  да бъдат  
извършени  при прекратяването . 
Телесно  тегло , консумация  на храна /вода  и усвояване  на храната  
41. Всички  животни  трябва  да бъдат  претегляни  в началото  на 
третирането , след  това най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . 
Измерването  на консумацията  на храна  и на усвояването  на храната  
следва  да се извършва  най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . Консум­  
ацията  на вода  трябва  да се измерва  най-малко  веднъж  седмично  в 
продължение  на първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  
месечно , ако химикалът  се прилага  чрез питейната  вода . Измервания  
на консумацията  на вода  също  следва  да бъдат  предвидени  при 
изследвания , при които  питейната  активност  се изменя . 
Хематология  и клинична  биохимия  
42. При изследвания , включващи  гризачи , трябва  да се извършват  хемат­  
ологични  изследвания  върху  всички  животни  от изследването  (10 
мъжки  и 10 женски  животни  на група ) на 3, 6 и 12 месеца , както  и 
при прекратяване  на изследването  (ако е по-дълго  от 12 месеца ). При 
мишките  може  да са необходими  сателитни  животни  за осъщ­  
ествяването  на всички  изисквани  хематологични  определяния  (вж. 
точка  19). При изследвания  с използване  на животни , различни  от 
гризачи , се вземат  проби  от по-малък  брой  животни  (например  4 
животни  от пол за група  при изследвания  с използване  на кучета ), на 
междинни  времена  на пробовземане  и при прекратяване  на 
изпитването , както  е описано  за гризачите . Измервания  на 3 месеца , 
както  при гризачи , така и при животни , различни  от гризачи , не е 
необходимо  да се провеждат , ако в предходно  90-дневно  изследване , 
проведено  при сравними  нива  на доза, не е наблюдавано  въздействие  
върху  хематологичните  параметри . Кръвните  проби  се вземат  от избран  
обект , например  чрез сърдечна  пункция , или от ретроорбиталния  синус , 
под упойка . 
43. Параметрите  от следния  списък  следва  да бъдат  изследвани  (38): общ и 
диференциален  брой  левкоцити , брой  на еритроцитите , брой  на тром­  
боцитите , концентрация  на хемоглобин , хематокрит , среден  обем  на 
еритроцитите  (MCV), средно  съдържание  на хемоглобин  (MCH), 
средна  концентрация  на хемоглобин  в еритроцитите  (MCHC), 
протромбиново  време  и активирано  парциално  тромбопластиново  
време . Други  хематологични  параметри , като телца  на Heinz или 
друга  нетипична  морфология  на еритроцити  или метхемоглобин , 
могат  да бъдат  измервани  според  случая  в зависимост  от токсичността  
на изпитвания  химикал . Като  цяло  следва  да се възприеме  гъвкав  
подход , в зависимост  от наблюдаваното  и/или очакваното  въздействие  
от даден  изпитван  химикал . Ако изпитваният  химикал  оказва  влияние  
върху  кръвотворната  система , изследвания  на броя  на ретикулоцитите  
и цитологията  на костния  мозък  може  също  така да бъдат  необходими , 
макар  че не е нужно  същите  да се провеждат  рутинно . 
44. Клиничните  биохимични  определяния  за проучване  на главните  
токсични  ефекти  върху  тъканите , и по-специално  върху  бъбреците  и 
черния  дроб , следва  да се извършват  върху  кръвни  проби , получени  от 
всички  изследвани  животни  (10 мъжки  и 10 женски  животни  от група ) 
в интервали  от време , идентични  с интервалите  при хематологичните  
изследвания . При мишките  може  да са необходими  сателитни  животни  
за осъществяването  на всички  изисквани  клинични  биохимични  
определяния . При изследвания  с използване  на животни , различни  от 
гризачи , се вземат  проби  от по-малък  брой  животни  (например  4 
животни  от пол за група  при изследвания  с използване  на кучета ), на 
междинни  времена  на пробовземане  и при прекратяване  на ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 494
 
изпитването , както  е описано  за гризачите . Измервания  на 3 месеца , 
както  при гризачи , така и при животни , различни  от гризачи , не е 
необходимо  да се провеждат , ако в предходно  90-дневно  изследване , 
проведено  при сравними  нива  на доза не е наблюдавано  въздействие  
върху  клиничните  биохимични  параметри . Препоръчва  се гладуване  
през нощта  за животните  (с изключение  на мишки ) преди  вземането  
на кръвните  проби  ( 1 ). Параметрите  от следния  списък  следва  да бъдат  
изследвани  (38): глюкоза , уреа  (азот в уреа ), креатинин , общо  белтъци , 
албумин , калций , натрий , калий , общо  холестерол , най-малко  две 
подходящи  изпитвания  за хепатоцелуларна  оценка  (аланинаминотранс­  
фераза , аспартатаминотрансфераза , глутаматдехидрогеназа , общо  
жлъчни  киселини ) (39) и най-малко  две подходящи  изпитвания  за 
хепатобилиарна  оценка  (алкална  фосфатаза , гама -глутамилтрансфераза , 
5’-нуклеотидаза , общо  билирубин , общо  жлъчни  киселини ) (39). Други  
клинични  химични  параметри , като триглицериди  на гладно , спец­  
ифични  хормони  и холинестераза , могат  да бъдат  измервани  според  
случая  в зависимост  от токсичността  на изпитвания  химикал . Като  
цяло  е необходим  гъвкав  подход , в зависимост  от наблюдаваното  
и/или очакваното  въздействие  от даден  изпитван  химикал . 
45. Изследвания  на урината  следва  да се извършат  върху  всички  
изследвани  животни  (10 мъжки  и 10 женски  животни  от група ), чрез 
проби , събрани  през същите  интервали , както  за хематологичните  и 
клиничните  химични  изследвания . Измервания  на 3 месеца  не е необ­  
ходимо  да се провеждат , ако в предходно  90-дневно  изследване , 
проведено  при сравними  нива  на доза, не е наблюдавано  въздействие  
върху  изследванията  на урина . Следният  списък  с параметри  е бил 
включен  в експертна  препоръка  относно  изследванията  на клиничната  
патология  (38): външен  вид, обем , осмолалност  или относителна  
плътност , рН, общо  белтъци  и глюкоза . Други  определяния  включват  
кетон , уробилиноген , билирубин  и скрити  кръвоизливи . Когато  е необ­  
ходимо , с оглед  разширяване  на проучването  върху  наблюдаваните  
въздействия , могат  да се използват  и допълнителни  параметри . 
46. Като  цяло  се счита , че е необходимо  базовите  хематологични  или 
клинични  биохимични  променливи  да бъдат  определени  преди  
третиране  при изследвания  с кучета , но не е необходимо  да се 
определят  при изследвания  с гризачи  (38). Ако обаче  базовите  данни  
от минали  периоди  (вж. точка  58) са неподходящи , следва  да се 
обмисли  генериране  на такива  данни . 
ПАТОЛОГИЯ  
Макроскопска  аутопсия  
47. Всички  животни , подложени  на изследване , обичайно  следва  да са 
обект  на цялостна , подробна  макроскопска  аутопсия , която  включва  
внимателен  преглед  на външната  повърхност  на тялото , всички  
отвори  и черепната , гръдната  и коремната  кухини  и тяхното  
съдържание . Въпреки  това също  така може  да бъде  предвидено  (при 
междинните  умъртвявания  или сателитните  групи ) измерванията  да се 
ограничат  до специални  ключови  мерки , като невротоксичност  или 
имунотоксичност  (вж. точка  21). Тези  животни  не следва  да се 
подлагат  на аутопсия  и следващите  аутопсията  процедури , описани  в 
следващите  точка . За животните  от индикаторната  група  може  да се 
изисква  аутопсия  за всеки  отделен  случай , по преценка  на ръко­  
водителя  на изследването . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 495  
( 1 ) За редица  измервания  на серума  и плазмата , и най-вече за глюкозата , се 
препоръчва  гладуване  през нощта . Основната  причина  за това предпочитание  е, 
че нарасналото  вариране , което  неминуемо  би последвало  ако не се прилага  
гладуване , би могло  да замаскира  по-трудно  доловими  ефекти  и да затрудни  
интерпретирането . От друга  страна  обаче , гладуването  през нощта  може  да 
въздейства  върху  общия  метаболизъм  на животните  и, по-специално  при 
изследване  на храненето , може  да наруши  дневната  експозиция  на изследвания  
химикал . Всички  животни  трябва  да се оценяват  в едно  и също  физиологично  
състояние  и следователно  е за предпочитане  подробни  или неврологични  оценки  
да се предвидят  за различен  ден от пробовземането  за клиничната  биохимия .
 48. Теглото  на органите  следва  да се измерва  при всички  животни , 
различни  от изключените  по последната  част от точка  47. 
Надбъбречните  жлези , мозъкът , епидидимите , сърцето , бъбреците , 
черният  дроб , яйчниците , далакът , тестисите , щитовидната  жлеза  (прет­  
еглена  след  фиксиране , с околощитовидни  жлези ), и матката  на всички  
животни  (освен  тези, които  са намерени  умиращи  и/или 
междувременно  умъртвени ) следва  да бъдат  почистени  от каквато  и 
да е допълнителна  тъкан , според  случая , и да бъде  установено  
мокрото  им тегло  възможно  най-бързо  след  дисекцията , за да се 
избегне  изсъхването  им. 
49. Следните  тъкани  следва  да бъдат  консервирани  в среда  за фиксиране , 
най-подходяща  както  за вида  тъкан , така и за очакваното  последващо  
хистопатологично  изследване  (40) (тъканите  в средни  скоби  са по 
избор ): 
всички  макроскопски  
увреждания  сърце  панкреас  стомах  ( предстомах , 
жлезист  стомах ) 
надбъбречна  жлеза  илеум  околощитовидна  
жлеза  [зъби ] 
аорта  празно  черво  периферен  нерв  тестис  
мозък  (включително  
срезове  от главния  мозък , 
малкия  мозък  и моста ) бъбреци  хипофиза  тимус  
цекум  слъзна  жлеза  
(клепачна ) простатна  жлеза  щитовидна  жлеза  
шийка  на матката  черен  дроб  право  черво  [ език] 
коагулираща  жлеза  бял дроб  слюнчена  жлеза  трахея  
колон  лимфни  възли  (както  
повърхностни , така и 
дълбоки ) семенно  мехурче  пикочен  мехур  
дванадесетопръстник  млечна  жлеза  (задълж­  
ителна  за женските  и 
— ако очевидно  може  
да им бъде  извършена  
дисекция  — от 
мъжките ) скелетен  мускул  матка  ( включително  
шийката ) 
епидидим  [ горни  дихателни  
пътища , включително  
нос, спирални  кости  
на носа  и допълн­  
ителни  околоносни  
кухини ] кожа  [ уретер ] 
око (включително  ретина ) хранопровод  гръбначен  мозък  (на 
три нива : шийно , 
гръдно  и поясно  ниво ) [уретра ] 
[бедрена  кост и става ] [обонятелна  луковица ] далак  влагалище  
жлъчен  мехур  (за видове , 
различни  от плъх ) яйчници  [ гръдна  кост] срез от костен  мозък  и/или 
костномозъчен  аспират , 
прясно  фиксиран  
Хардерова  жлеза  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 496
 
В случай  на чифтен  орган , например  бъбреци  и надбъбречни  жлези , 
следва  да се консервират  и двата  органа . Клиничните  и другите  
сведения  могат  да посочат  необходимостта  от изследвания  на допълн­  
ителни  тъкани . Също  така всички  органи , които  на основата  на 
познатите  свойства  на изпитвания  химикал  се считат  за вероятни  
прицелни  органи , също  следва  да бъдат  консервирани . При 
изследвания , включващи  дермален  път на прилагане , следва  да бъдат  
консервирани  органите , посочени  в списъка  за прилагане  по орален  
път, като е необходимо  специфично  вземане  на проби  и консервиране  
на кожа  от мястото  на прилагане . При изследвания  по инхалаторен  път 
списъкът  с тъканите  от дихателните  пътища  за консервиране  и 
изследване  следва  да е в съответствие  с препоръките  от глави  Б.8. от 
настоящото  приложение  (9) и Б.29. от настоящото  приложение  (10). По 
отношение  на други  органи /тъкани  (и в допълнение  към специално  
консервираните  тъкани  от дихателните  пътища ) органите , които  
следва  да бъдат  изследвани , са посочени  в списъка  за прилагане  по 
орален  път. 
Хистопатология  
50. Достъпни  са насоки  относно  най-добрите  практики  при провеждането  
на изследвания  на токсикологичната  патология  (40). Минималните  
хистопатологични  изследвания  следва  да бъдат : 
— всички  тъкани  от животните  от групата  с висока  доза и от 
контролната  група , 
— всички  тъкани  от животните , които  са в терминално  състояние  или 
са умъртвени  по време  на изследването , 
— всички  тъкани , при които  се наблюдават  макроскопски  аномалии , 
— прицелните  тъкани  или тъканите , които  в групата  с най-висока  доза 
са показали  свързани  с третирането  изменения , от всички  животни  
във всички  групи  с доза, различна  от най-високата , 
— в случай  на чифтен  орган , например  бъбреци  и надбъбречни  жлези , 
следва  да се изследват  и двата  органа . 
НАБЛЮДЕНИЯ  (ФАЗА  ЗА КАНЦЕРОГЕННОСТ ) 
51. Всички  животни  трябва  да бъдат  проверени  за заболяемост  или 
смъртност , обикновено  в началото  и в края  на всеки  ден, включително  
в съботни  и неделни  дни и празници . Животните  следва  допълнително  
да бъдат  проверявани  веднъж  на ден за специфични  сигнали  от токс­  
икологична  значимост . В случай  на изследване  с хранене  през сонда , 
животните  трябва  да бъдат  преглеждани  през периода , непосредствено  
следващ  дозирането . Специално  внимание  трябва  да се обърне  на 
развитието  на тумори : трябва  да се регистрират  времето  на поява , 
локализацията , размерите , външният  вид и развитието  на всички  
тумори , които  могат  да бъдат  видяни  и опипани  при макроскопско  
изследване . 
52. Всички  животни  трябва  да бъдат  претегляни  в началото  на 
третирането , след  това най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . 
Измерването  на консумацията  на храна  и на усвояването  на храната  
следва  да се извършва  най-малко  веднъж  седмично  в продължение  на 
първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  месечно . Консум­  
ацията  на вода  трябва  да се измерва  най-малко  веднъж  седмично  в 
продължение  на първите  13 седмици , а след  това най-малко  веднъж  
месечно , ако химикалът  се прилага  чрез питейната  вода . Измервания  
на консумацията  на вода  също  следва  да бъдат  предвидени  при 
изследвания , при които  питейната  активност  се изменя . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 497
 
Хематология , клинична  биохимия  и други  измервания  
53. С цел получаване  на максимално  количество  информация  от 
изследването , особено  относно  съображения  за начина  на действие , 
могат  да бъдат  взети  кръвни  проби  за хематология  и клинична  
биохимия , но това е по преценка  на ръководителя  на изследването . 
Изследване  на урината  може  също  да е подходящо . Данни  за 
животните , използвани  през фазата  за хронична  токсичност  от 
изследването , обичайно  с продължителност  12 месеца  (точка  34), 
предоставят  информация  относно  тези параметри . Допълнителни  
насоки  относно  стойността  на вземането  на такива  проби  като част 
от изследване  за канцерогенност  са представени  в Ръководство  
№ 116 (7). Ако се вземат  кръвни  проби , същите  следва  да бъдат  
събрани  в края  на периода  на изпитването , непосредствено  преди  или 
като част от процедурата  по умъртвяването  на животните . Кръвните  
проби  следва  да се вземат  от избран  обект , например  чрез сърдечна  
пункция , или от ретроорбиталния  синус , под упойка . Кръвни  натривки  
може  също  така да се подготвят  за изследване , особено  ако костният  
мозък  изглежда  да е прицелният  орган , въпреки  че стойността  на 
такава  оценка  на кръвни  натривки  във фазата  за канцерогенност  за 
оценка  на канцерогенния /онкогенния  потенциал  е под съмнение  (38).  
ПАТОЛОГИЯ  
Макроскопска  аутопсия  
54. Всички  животни , подложени  на изследване , с изключение  на животни  
от индикаторна  група  и други  животни  от сателитни  групи  (вж. точка  
20), се подлагат  на цялостна , подробна  макроскопска  аутопсия , която  
включва  внимателен  преглед  на външната  повърхност  на тялото , 
всички  отвори  и черепната , гръдната  и коремната  кухини  и тяхното  
съдържание . За животни  от индикаторна  група  и други  животни  от 
сателитни  групи  може  да се изисква  аутопсия  въз основа  на всеки  
отделен  случай , по преценка  на ръководителя  на изследването . Прет­  
еглянето  на органи  обичайно  не е част от изследването  за 
канцерогенност , тъй като старческите  изменения  и, на по-късен  етап, 
развитието  на тумори , оказват  неблагоприятно  влияние  върху  полез­  
ността  на данните  за теглото  на отделните  органи  поради  невъ­  
зможност  за разграничаване . Те обаче  могат  да бъдат  от решаващо  
значение  за извършване  на оценка  на значимостта  на доказателствения  
материал  и особено  за съображенията  относно  начина  на действие . Ако 
са част от сателитно  изследване , те следва  да бъдат  събрани  не по- 
късно  от една  година  след  началото  на изследването . 
55. Следните  тъкани  следва  да бъдат  консервирани  в среда  за фиксиране , 
най-подходяща  както  за вида  тъкан , така и за очакваното  последващо  
хистопатологично  изследване  (40) (тъканите  в средни  скоби  са по 
избор ): 
всички  макроскопски  
увреждания  сърце  панкреас  стомах  ( предстомах , 
жлезист  стомах ) 
надбъбречна  жлеза  илеум  околощитовидна  
жлеза  [зъби ] 
аорта  празно  черво  периферен  нерв  тестис  
мозък  (включително  
срезове  от главния  мозък , 
малкия  мозък  и моста ) бъбреци  хипофиза  тимус  
цекум  слъзна  жлеза  
(клепачна ) простатна  жлеза  щитовидна  жлеза  
шийка  на матката  черен  дроб  право  черво  [ език] 
коагулираща  жлеза  бял дроб  слюнчена  жлеза  трахея  
колон  лимфни  възли  (както  
повърхностни , така и 
дълбоки ) семенно  мехурче  пикочен  мехур  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 498
 
дванадесетопръстник  млечна  жлеза  (задълж­  
ителна  за женските  и 
— ако очевидно  може  
да им бъде  извършена  
дисекция  — от 
мъжките ) скелетен  мускул  матка  ( включително  
шийката ) 
епидидим  [ горни  дихателни  
пътища , включително  
нос, спирални  кости  
на носа  и допълн­  
ителни  околоносни  
кухини ] кожа  [ уретер ] 
око (включително  ретина ) хранопровод  гръбначен  мозък  (на 
три нива : шийно , 
гръдно  и поясно  ниво ) [уретра ] 
[бедрена  кост и става ] [обонятелна  луковица ] далак  влагалище  
жлъчен  мехур  (за видове , 
различни  от плъх ) яйчници  [ гръдна  кост] срез от костен  мозък  и/или 
костномозъчен  аспират , 
прясно  фиксиран  
Хардерова  жлеза  
В случай  на чифтен  орган , например  бъбреци  и надбъбречни  жлези , 
следва  да се консервират  и двата  органа . Клиничните  и другите  
сведения  могат  да посочат  необходимостта  от изследвания  на допълн­  
ителни  тъкани . Всякакви  други  органи , които  на основата  на познатите  
свойства  на изпитвания  химикал  се считат  за вероятни  прицелни  
органи , също  следва  да бъдат  консервирани . При изследвания , 
включващи  дермален  път на прилагане , следва  да бъдат  консервирани  
органите , посочени  в списъка  за прилагане  по орален  път, като е необ­  
ходимо  специфично  вземане  на проби  и консервиране  на кожа  от 
мястото  на прилагане . При изследвания  по инхалаторен  път списъкът  
с тъканите  от дихателните  пътища  за консервиране  и изследване  следва  
да е в съответствие  с препоръките  от глави  Б.8 от настоящото  прил­  
ожение  (8) и Б.29 от настоящото  приложение  (9). По отношение  на 
други  органи /тъкани  (и в допълнение  към специално  консервираните  
тъкани  от дихателните  пътища ) органите , които  следва  да бъдат  
изследвани , са посочени  в списъка  за прилагане  по орален  път. 
Хистопатология  
56. Достъпни  са насоки  относно  най-добрите  практики  при провеждането  
на изследвания  на токсикологичната  патология  (40). Изследваните  
тъкани  следва  да бъдат  най-малко : 
— всички  тъкани  от животните  от групата  с висока  доза и от 
контролната  група , 
— всички  тъкани  от животните , които  са в терминално  състояние  или 
са умъртвени  по време  на изследването , 
— всички  тъкани , при които  се наблюдават  макроскопски  аномалии , 
включително  тумори , 
— когато  свързани  с третирането  хистопатологични  промени  се набл­  
юдават  в групата  с най-висока  доза, същите  тези тъкани  трябва  да 
бъдат  изследвани  върху  всички  животни  от групите  с всички  дози , 
различни  от най-високата , 
— в случай  на чифтни  органи , например  бъбреци  и надбъбречни  
жлези , следва  да се изследват  и двата  органа . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 499
 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  (КАНЦЕРОГЕННОСТ  И ХРОНИЧНА  
ТОКСИЧНОСТ ) 
Данни  
57. Следва  да бъдат  посочени  индивидуални  данни  за животните  за всички  
оценени  параметри . Допълнително  всички  данни  следва  да се обобщят  
в таблична  форма , показваща  за всяка  изпитвана  група  броя  на 
животните  при започване  на изпитването , броя  на животните , които  
са открити  мъртви  по време  на изследването  или са били  умъртвени  
по хуманни  причини , и времето  на смъртта  или умъртвяването  по 
хуманни  причини , броя  на животните  с проявени  признаци  на токс­  
ичност , описание  на наблюдаваните  признаци  на токсичност , включ­  
ително  времето  на започването , продължителността  и силата  на 
всички  токсични  въздействия , броя  на животните  с увреждания , типа  
на уврежданията  и процента  на животните , показващи  всеки  отделен  
тип увреждане . В таблици  с обобщени  данни  следва  да се посочат  
средните  стойности  и стандартните  отклонения  (за непрекъснатите  
данни  от изпитвания ) при животни , показващи  токсично  въздействие  
или при които  са налице  увреждания , в допълнение  към степенуването  
на уврежданията . 
58. Контролните  данни  за минали  периоди  могат  да бъдат  полезни  при 
интерпретирането  на резултатите  от изследването , например  в случай , 
когато  има признаци , че данните , предоставени  от паралелни  контроли , 
показват  съществено  несъответствие  при сравнение  с актуални  данни  
от контролни  животни  от една  и съща  извършваща  изпитвания  
лаборатория /колония . Ако контролните  данни  за минали  периоди  са 
оценени , следва  да се представят  от същата  лаборатория , да се 
отнасят  за животни  на една  и съща  възраст  и от една  и съща  порода , 
и да са генерирани  през петте  години , предхождащи  съответното  
изследване . 
59. Където  е приложимо , числовите  резултати  следва  да се оценяват  чрез 
използване  на подходящ  и общоприет  статистически  метод . Статист­  
ическите  методи  и данните , които  следва  да се анализират , трябва  да се 
избират  по време  на планирането  на изследването  (точка  9). Изборът  
трябва  да предвижда  възможност  за корекция  за преживяемост , ако е 
необходимо . 
60. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— физическа  природа , чистота  и физични  и химични  свойства , 
— данни  за идентифициране  на химикала , 
— източник  на химикала , 
— номер  на партидата , 
— сертификат  за химичен  анализ . 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— обосновка  за избора  на носител  (когато  носителят  е различен  от 
вода ). 
Изпитвани  животни : 
— използван  вид/порода  и обосновка  за направения  избор , 
— брой , възраст  и пол на животните  в началото  на изпитвнето , 
— източник , условия  на отглеждане , хранителен  режим  и т.н., 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на изпитването . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 500
 
Условия  на изпитването : 
— обосновка  за пътя  на прилагане  и избора  на доза, 
— когато  е приложимо , използваните  статистически  методи  за анализ  
на данните , 
— подробна  информация  за състава  на изпитвания  химикал /изг­ 
отвянето  на хранителния  режим , 
— аналитични  данни  за достигната  концентрация , стабилност  и 
хомогенност  на сместа , 
— път на прилагане  и подробна  информация  за прилагането  на 
изпитвания  химикал , 
— за изследвания  по инхалаторен  път, дали  е само  през носа , или на 
цялото  тяло , 
— действителните  дози  (mg на kg телесно  тегло  дневно ) и коефициент  
на превръщане  от концентрация  на изпитвания  химикал  в храна / 
питейна  вода  (mg на kg или ppm) в действителна  доза, ако е прил­  
ожимо , 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  за пиене . 
Резултати  (следва  да се представят  обобщени  таблични  данни  и 
индивидуални  данни  за животните ): 
Общи  положения  
— данни  за преживяемостта , 
— телесно  тегло /промени  в телесното  тегло , 
— консумация  на храна , изчисления  на усвояването  на храната , ако са 
извършени , и потребление  на вода , ако е приложимо , 
— токсикокинетични  данни  (ако са налични ), 
— офталмоскопия  (ако е налична ), 
— хематология  (ако е налична ), 
— клинична  химия  (ако е налична ); 
Клинични  находки  
— признаци  на токсичност , 
— поява  (и сила , ако е степенувана ) на всякакви  аномалии , 
— природа , сила  и продължителност  на наблюдаваните  клинични  
признаци  (независимо  обратими  или необратими ); 
Данни  от аутопсията  
— телесната  маса  при настъпване  на смъртта , 
— тегло  на органите  и техните  съотношения , ако е приложимо , 
— находки  при аутопсията ; поява  и сила  на аномалиите . 
Хистопатология  
— хистопатологични  находки , които  не се отнасят  до ново­  
образувания , 
— хистопатологични  находки , които  се отнасят  до новообразувания , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 501
 
— съответствие  между  находките  от макроскопското  и 
микроскопското  изследване , 
— подробно  описание  на всички  свързани  с третирането  хистопат­  
ологични  находки , включително  степенуването  на силата , 
— отчет  за всякакви  партньорски  проверки  на предметни  стъкла . 
Статистическа  обработка  на резултатите , където  е приложимо  
Обсъждане  на резултатите , включително : 
— Обсъждане  на всякакви  подходи  за моделиране  
— Зависимости  доза-отговор  
— Контролни  данни  за минали  периоди  
— Разглеждане  на всякаква  информация , свързана  с начин  на действие  
— Определяне  на BMD, NOAEL или LOAEL  
— Относимост  към човека  
Заключения  
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (1995). Report of the Consultation Meeting on Sub-chronic and 
Chronic Toxicity/Carcinogenicity Testing (Rome, 1995), internal working document, Environment Directorate, OECD, Paris.
 
(2) EPA (2005). Guidelines for Carcinogen Risk Assessment Risk Assessment 
Forum U.S. Environmental Protection Agency Washington, DC.  
(3) Combes RD, Gaunt I, Balls M (2004). A Scientific and Animal Welfare 
Assessment of the OECD Health Effects Test Guidelines for the Safety 
Testing of Chemicals under the European Union REACH System. ATLA 
32: 163-208  
(4) Barlow SM, Greig JB, Bridges JW et al (2002). Hazard identification by 
methods of animal-based toxicology. Food. Chem. Toxicol. 40: 145-191  
(5) Chhabra RS, Bucher JR, Wolfe M, Portier C (2003). Toxicity characteri ­
zation of environmental chemicals by the US National Toxicology 
Programme: an overview. Int. J. Hyg. Environ. Health 206: 437-445  
(6) Глава  Б.27 от настоящото  приложение  („Изследване  на субхронична  
орална  токсичност  — 90-дневно  изследване  на токсичността  при не 
гризачи  с повтаряща  се доза“). 
(7) OECD (2012). Guidance Document on the Design and Conduct of Chronic 
Toxicity and Carcinogenicity Studies, Supporting Test Guidelines 451, 452 and 453 - Second edition. Series on Testing and Assessment № 116, 
available on the OECD public website for Test Guideline at www.oecd.org/ 
env/testguidelines.
 
(8) OECD (2009). Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing. 
Series on Testing and Assessment № 39, ENV/JM/MONO(2009)28, 
OECD, Paris.  
(9) Глава  Б.8 от настоящото  приложение  („Субакутна  инхалаторна  токс­  
ичност : 28-дневно  изследване “). 
(10) Глава  Б.29 от настоящото  приложение  („Субхронична  инхалаторна  
токсичност : 90-дневно  изследване “). 
(11) Глава  Б.9 от настоящото  приложение  („Токсичност  (дермална ) с 
многократни  дози  (28 дни)“). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 502
 
(12) Boobis AR, Cohen SM, Dellarco V, McGregor D, Meek ME, Vickers C, 
Willcocks D, Farland W (2006). IPCS Framework for analyzing the 
Relevance of a Cancer Mode of Action for Humans. Crit. Rev. in Toxicol, 36: 793-801.
 
(13) Cohen SM, Meek ME, Klaunig JE, Patton DE, Fenner-Crisp PA (2003). 
The human relevance of information on carcinogenic Modes of Action: An 
Overview. Crit. Rev. Toxicol. 33:581-589.  
(14) Holsapple MP, Pitot HC, Cohen SN, Boobis AR, Klaunig JE, Pastoor T, 
Dellarco VL, Dragan YP (2006). Mode of Action in Relevance of Rodent Liver Tumors to Human Cancer Risk. Toxicol. Sci. 89:51-56.
 
(15) Meek EM, Bucher JR, Cohen SM, Dellarco V, Hill RN, 
Lehman-McKemmon LD, Longfellow DG, Pastoor T, Seed J, Patton DE 
(2003). A Framework for Human Relevance analysis of Information on Carcinogenic Modes of Action. Crit. Rev. Toxicol. 33:591-653.
 
(16) Carmichael NG, Barton HA, Boobis AR  et al.  (2006). Agricultural 
Chemical Safety Assessment: A Multisector Approach to the Moderni ­
zation of Human Safety Requirements. Crit. Rev. Toxicol. 36, 1-7.  
(17) Barton HA, Pastoor TP, Baetcke T  et al.  (2006). The Acquisition and 
Application of Absorption, Distribution, Metabolism, and Excretion (ADME) Data in Agricultural Chemical Safety Assessments. 
Crit. Rev. Toxicol. 36: 9-35.
 
(18) Doe JE, Boobis AR, Blacker A  et al . (2006). A Tiered Approach to 
Systemic Toxicity Testing for Agricultural Chemical Safety Assessment. Crit. Rev. Toxicol. 36: 37-68.
 
(19) Cooper RL, Lamb JS, Barlow SM  et al.  (2006). A Tiered Approach to Life 
Stages Testing for Agricultural Chemical Safety Assessment. Crit. Rev. 
Toxicol. 36: 69-98.  
(20) OECD (2002). Guidance Notes for Analysis and Evaluation of Chronic 
Toxicity and Carcinogenicity Studies, Series on Testing and Assessment № 35 and Series on Pesticides № 14, ENV/JM/MONO(2002)19, OECD, 
Paris.
 
(21) OECD (2000). Guidance Document on the recognition, assessment, and use 
of clinical signs as humane endpoints for experimental animals used in safety evaluation, Series on Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MO ­
NO(2000)7, OECD, Paris.
 
(22) Rhomberg LR, Baetcke K, Blancato J, Bus J, Cohen S, Conolly R, Dixit R, 
Doe J, Ekelman K, Fenner-Crisp P, Harvey P, Hattis D, Jacobs A, Jacobson-Kram D, Lewandowski T, Liteplo R, Pelkonen O, Rice J, Somers D, Turturro A, West W, Olin S (2007). Issues in the Design and 
Interpretation of Chronic Toxicity and Carcinogenicity Studies in Rodents: 
Approaches to Dose Selection Crit Rev. Toxicol. 37 (9): 729 – 837.
 
(23) ILSI (International Life Sciences Institute) (1997). Principles for the 
Selection of Doses in Chronic Rodent Bioassays. Foran JA (Ed.). ILSI Press, Washington, DC.
 
(24) Griffiths SA, Parkinson C, McAuslane JAN and Lumley CE (1994). The 
utility of the second rodent species in the carcinogenicity testing of phar ­
maceuticals. The Toxicologist 14(1):214.  
(25) Usui T, Griffiths SA and Lumley CE (1996). The utility of the mouse for 
the assessment of the carcinogenic potential of pharmaceuticals. In D’Arcy 
POF & Harron DWG (eds). Proceedings of the Third International 
Conference on Harmonisation. Queen’s University Press, Belfast. pp 279- 284.
 
(26) Carmichael NG, Enzmann H, Pate I, Waechter F (1997). The Significance 
of Mouse Liver Tumor Formation for Carcinogenic Risk Assessment: 
Results and Conclusions from a Survey of Ten Years of Testing by the 
Agrochemical Industry. Environ Health Perspect 105:1196-1203.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 503
 
(27) Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
22 септември  2010 година  относно  защитата  на животните , използвани  
за научни  цели  (ОВ L 276, 20.10.2010 г., стр. 33).  
(28) National Research Council, 1985. Guide for the care and use of laboratory 
animals. NIH Publication № 86-23. Washington D.C., US. Dept. of Health 
and Human Services.  
(29) GV-SOLAS (Society for Laboratory Animal Science, Gesellschaft für 
Versuchstierkunde, December, 1989). Publication on the Planning and Structure of Animal Facilities for Institutes Performing Animal Experi ­
ments. ISBN 3-906255-06-9.
 
(30) GV-SOLAS (Society for Laboratory Animal Science, Gesellschaft für 
Versuchstierkunde, 2006). Microbiological monitoring of laboratory animals in various housing systems.
 
(31) Diehl K-H, Hull R, Morton D, Pfister R, Rabemampianina Y, Smith D, 
Vidal J-M, van de Vorstenbosch C. (2001). A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes. Journal of Applied Toxicology, 21:15-23.
 
(32) IPCS (1986). Principles and Methods for the Assessment of Neurotoxicity 
Associated with Exposure to Chemicals. Environmental Health Criteria Document № 60.
 
(33) Tupper DE, Wallace RB (1980). Utility of the Neurologic Examination in 
Rats. Acta Neurobiol. Exp. 40: 999-1003.  
(34) Gad SC (1982). A Neuromuscular Screen for Use in Industrial Toxicology. 
J. Toxicol.Environ. Health 9: 691-704.  
(35) Moser VC, McDaniel KM, Phillips PM (1991). Rat Strain and Stock 
Comparisons Using a Functional Observational Battery: Baseline Values and Effects of Amitraz. Toxicol. Appl. Pharmacol. 108: 267-283.
 
(36) Meyer OA, Tilson HA, Byrd WC, Riley MT (1979). A Method for the 
RoutineAssessment of Fore- and Hind-limb Grip Strength of Rats and 
Mice. Neurobehav. Toxicol. 1: 233-236.  
(37) Crofton KM, Howard JL, Moser VC, Gill MW, Reiter LW, Tilson HA, 
MacPhail RC (1991). Interlaboratory Comparison of Motor Activity Expe ­
riments: Implication for Neurotoxicological Assessments. Neurotoxicol. 
Teratol. 13: 599-609.  
(38) Weingand K, Brown G, Hall R  et al . (1996). Harmonisation of Animal 
Clinical Pathology Testing in Toxicity and Safety Studies. Fundam. & 
Appl. Toxicol. 29: 198-201.  
(39) (Проект  на) документ  на Европейска  агенция  по лекарствата  „Нек­  
линични  насоки  относно  хепатотоксичността , индуцирана  от 
лекарствени  продукти “ (док. № EMEA/CHMP/SWP/a50115/2006).  
(40) Crissman JW, Goodman DG, Hildebrandt PK  et al.  (2004). Best Practices 
Guideline: Toxicological Histopathology. Toxicologic Pathology 32: 126-131.
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 504
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  на 
настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 505
 
Б.34. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА РАЗМНОЖАВАНЕТО  В 
ЕДНО  ПОКОЛЕНИЕ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
1.3. Вещества  за сравнение  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество  се прилага  в нарастващи  дози  върху  
няколко  групи  мъжки  и женски  животни . Мъжките  животни  
трябва  да бъдат  дозирани  по време  на растежа  и в продължение  
на поне  един  пълен  цикъл  на сперматогенеза  (приблизително  56 
дни при мишки  и 70 дни при плъхове ), за да бъдат  предизвикани  
евентуални  нежелани  ефекти  на изпитваното  вещество  върху  
сперматогенезата . 
Женските  животни  от родителското  поколение  (Р) трябва  да 
бъдат  дозирани  с изпитваното  вещество  в продължение  на 
поне  два пълни  цикъла  на разгонване . След  това животните  се 
чифтосват . Изпитваното  вещество  се прилага  и при двата  пола  
по време  на чифтосването  и след  това само  при женските  
животни  през бременността  и по време  на кърменето . Този  
метод  ще изисква  модифициране  за прилагане  чрез инхалиране . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Няма . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Подготовка  
Преди  изпитването  здрави  млади  животни  се избират  по случаен  
признак  и се разпределят  в третирана  и контролна  група . 
Животните  се държат  при експериментални  условия  на 
настаняване  и хранене  в продължение  поне  на пет дни преди  
изпитването . Препоръчва  се изпитваното  вещество  да се прилага  
с храната  или в питейната  вода . Приемливи  са и други  начини  
на прилагане  Дозирането  при всички  животни  трябва  да се 
извършва  по един  и същ метод  по време  на съответния  
експеримент . Ако за улесняване  на дозирането  се използват  
помощно  вещество  или други  добавки , трябва  да е известно , 
че те не водят  до токсични  ефекти . Дозирането  трябва  да бъде  
седем  дни в седмицата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 506
 
Е к с п е р и м е н т а л н и ж и в о т н и 
Избор  на вид 
Предпочитаните  видове  са плъх  или мишка . Трябва  да се 
използват  здрави  животни , които  в миналото  не са били  
подлагани  на експериментални  процедури . Не трябва  да се 
използват  породи  с ниска  плодовитост . Експерименталните  
животни  трябва  да бъдат  характеризирани  по отношение  на 
вида , породата , пола , теглото  и/или възрастта . 
За адекватна  оценка  на плодовитостта  трябва  да бъдат  
изследвани  както  мъжки , така и женски  животни . Всички  
експериментални  и контролни  животни  трябва  да бъдат  отбити  
преди  започването  на дозирането . 
Брой  и пол 
Всяка  третирана  контролна  група  трябва  да се състои  от дост­  
атъчен  брой  животни , за да се получат  20 бременни  женски  
животни  на или около  термин . 
Целта  е да се получат  достатъчно  на брой  бременности  и 
потомство , за да се осигури  значима  оценка  на потенциала  на 
веществото  да влияе  върху  плодовитостта , бременността  и 
майчиното  поведение  при животните  от поколение  Р, както  и 
сученето , растежа  и развитието  на поколението  F 1 от зачеването  
до отбиването . 
У с л о в и я н а и з п и т в а н е т о 
Храна  и вода  трябва  да се предоставят  ad libitum . Около  
раждането  бременните  женски  трябва  да бъдат  настанени  в 
индивидуални  клетки  за родилки  и майки  и могат  да им бъдат  
предоставени  материали  за гнездо . 
Н и в а н а д о з и р а н е 
Трябва  да се използват  поне  три третирани  групи  и контролни  
групи . Ако за прилагане  на изпитваното  вещество  се използва  
носител , контролната  група  трябва  да получава  най-голямото  
използвано  количество  носител . Ако изпитваното  вещество  
предизвиква  намаляване  на приема  или усвояването  на 
храната , тогава  може  да се сметне  за необходимо  използването  
на втора  контролна  група  за храненето . В идеалния  случай , 
освен  ако няма  ограничение  поради  физичното /химичното  
естество  или биологичните  ефекти  на изпитваното  вещество , 
най-високото  ниво  на дозиране  трябва  да предизвика  токс­  
ичност , но не и смъртност  при животните  от родителското  (Р) 
поколение . Междинната  доза(и) трябва  да предизвиква  
минимални  токсични  ефекти , дължащи  се на изпитваното  
вещество , а ниската  доза не трябва  да предизвиква  никакви  
видими  нежелани  ефекти  върху  родителите  или поколението . 
Когато  е прилагана  със сонда  или капсули , даваната  на всяко  
животно  доза трябва  да се базира  на индивидуалното  телесно  
тегло  на всяко  животно  и да се коригира  ежеседмично  към 
измененията  на телесното  тегло . По желание , за женските  
животни  по време  на бременността  дозите  могат  да се базират  
на телесното  тегло  на ден 0 или 6 от бременността . 
Г р а н и ч н о и з п и т в а н е 
При вещества  с ниска  токсичност , ако доза, която  е поне  1 000 
mg/kg, не води  до поява  на признаци  на повлияване  на репрод­  
уктивната  функция , изпитвания  с други  дози  може  да не се 
смятат  за необходими . Ако предварителното  изпитване  при 
високо  ниво  на дозиране  ниво  с явни  данни  за майчина  токс­  
ичност , не показва  нежелани  ефекти  върху  плодовитостта , 
изпитвания  при други  нива  на дозиране  може  да не се смятат  
за необходими . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 507
 
Провеждане  на изпитването  
Е к с п е р и м е н т а л н и с х е м и 
Ежедневното  дозиране  на мъжките  животни  от родителското  
поколение  (Р) трябва  да започне , когато  те са на около  пет до 
девет  седмична  възраст , след  като са отбити  и са аклим­  
атизирани  в продължение  на поне  пет дни. При плъхове  
дозирането  продължава  10 седмици  преди  периода  на чифт­  
осване  (за мишки  периодът  е осем  седмици ). Мъжките  
животни  трябва  да бъдат  убити  и изследвани  в края  на чифт­  
осването , или, алтернативно , мъжките  могат  да бъдат  задържани  
на експерименталната  диета  за евентуално  получаване  на второ  
котило  и трябва  да бъдат  убити  и изследвани  преди  края  на 
изпитването . За женските  животни  от родителското  поколение  
(Р) дозирането  трябва  д а започне  след  най-малко  пет дни 
аклиматизиране  в продължение  на поне  две седмици  преди  
чифтосването . Ежедневното  дозиране  при женските  животни  
от поколението  Р трябва  да продължи  през целия  триседмичен  
период  на чифтосване , бременност  и до отбиването  на 
поколението  F 1 . Трябва  да се има предвид  модифициране  на 
схемата  за дозиране  на базата  на друга  съществуваща  
информация  за изпитваното  вещество , като стимулиране  на 
метаболизма  или биоакумулиране . 
П р о ц е д у р а з а ч и ф т о с в а н е 
При изпитвания  за токсичност  за размножаването  може  да се 
използва  чифтосване  в съотношение  1:1 (едно  мъжко  за едно  
женска  животно ), или 1:2 (едно  мъжко  за две женски  животни ). 
При чифтосване  1:1 едно  женско  животно  трябва  да се оставя  с 
едно  и също  мъжко  животно  до настъпване  на бременност  или 
до изтичането  на три седмици . Всяка  сутрин  женските  животни  
трябва  да бъдат  преглеждани  за наличие  на сперма  или 
вагинални  запушалки . Ден 0 на бременността  се определя  като 
деня , в който  са открити  вагинална  запушалка  или сперма . 
Двойките , които  не успеят  да се чифтосат , трябва  да бъдат  
оценени  за определяне  на причината  за предполагаемото  безп­  
лодие . 
Това  може  да включва  процедури  като предоставяне  на допълн­  
ителни  възможности  за чифтосване  с други  мъжки  и женски  
животни  с доказана  оплодителна  способност , микроскопско  
изследване  на репродуктивните  органи  и изследване  на цикъла  
на разгонване  или сперматогенезата . 
Г о л е м и н а н а к о т и л о т о 
На животните , дозирани  при изпитване  за плодовитост , се дава 
възможност  да родят  потомството  си нормално  и да го отгледат  
до етапа  на отбиване  без стандартизиране  на котилото . 
Когато  се извършва  стандартизиране , се препоръчва  следната  
процедура . Между  ден 1 и 4 след  раждането  големината  на 
всяко  котило  може  да бъде  коригирана  посредством  
елиминиране  на излишните  новородени  животни  чрез 
селекция , за да се получат , колкото  е възможно  по-точно , 
четири  мъжки  и четири  женски  животни  за котило . 
Когато  броят  на мъжките  или женските  новородени  животни  не 
дава възможност  да се получат  по четири  животни  от пол за 
котило , приемлива  е частична  корекция  (например , пет мъжки  
и три женски ). Корекция  не се прави  при котила , състоящи  се от 
по-малко  от осем  новородени  животни . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 508
 
Н а б л ю д е н и я 
По време  на изпитването  всяко  животно  трябва  да се наблюдава  
поне  един  път дневно . Трябва  да се регистрират  съответните  
изменения  в поведението , признаците  за затруднено  или продъ­  
лжително  раждане  и всички  признаци  на токсичност , включ­  
ително  и смъртност . През  времето  преди  чифтосването  и по 
време  на чифтосването , консумацията  на храна  трябва  
ежедневно  да се измерва . След  раждането  и по време  на лакт­  
ацията  измерванията  на консумацията  на храна  (и на консум­  
ацията  на вода , когато  изпитваното  вещество  се прилага  в 
питейната  вода ) трябва  да се извършват  в същия  ден като прет­  
еглянето  на котилото . Мъжките  и женските  животни  от 
поколението  Р трябва  да бъдат  претеглени  през първия  ден на 
дозирането  и след  това един  път седмично . Тези  наблюдения  
трябва  да се провеждат  за всяко  възрастно  животно  поотделно . 
Продължителността  на бременността  трябва  да се изчислява  от 
ден 0 на бременността . Всяко  котило  трябва  да бъде  прегледано  
възможно  най скоро  след  раждането , за да се установят  броят  и 
полът  на новородените  животни , мъртвородените , живородените  
и наличието  на макроскопски  аномалии . 
Мъртвите  новородени  и новородените , които  са умъртвени  на 
ден 4, трябва  да бъдат  съхранени  и изследвани  за възможни  
дефекти . Живите  новородени  животни  трябва  да бъдат  
преброени  и котилата  да бъдат  претеглени  на сутринта  след  
раждането  и на 4-ти и 7-и ден и след  това всяка  седмица  до 
прекратяване  на изпитването , когато  животните  трябва  да бъдат  
претеглени  индивидуално . 
Трябва  да се регистрират  физическите  и поведенческите  
аномалии , наблюдавани  при майките  и потомството . 
Патологично  изследване  
А у т о п с и я 
При умъртвяването  или смъртта  по време  на изпитването , 
животните  от поколение  Р трябва  да бъдат  изследвани  
макроскопски  за структурни  аномалии  или патологични  
изменения , като се обръща  специално  внимание  на органите  
от размножителната  система . Мъртвите  или умиращи  
новородени  животни  трябва  да бъдат  изследвани  за дефекти . 
Х и с т о п а т о л о г и ч н о и з с л е д в а н е 
Яйчниците , матката , шийката , влагалището , тестисите , надс­  
еменниците , семенните  мехурчета , простатната  жлеза , коаг­  
улиращата  жлеза , хипофизната  жлеза  и целевите  орган (и) на 
всички  животни  от поколение  Р трябва  да бъдат  съхранени  за 
микроскопско  изследване . В случай  че тези органи  не са 
изследвани  при други  изпитвания  с многократни  дози , те 
трябва  да бъдат  изследвани  микроскопски  при всички  животни  
на висока  доза, при контролните  животни  и при животните , 
които  умират  по време  на изпитването , ако е възможно . 
Органите , в които  при тези животни  се наблюдават  аномалии , 
трябва  след  това да бъдат  изследвани  при всички  други  животни  
от поколение  Р. В тези случаи  трябва  да се направи  
микроскопско  изследване  на всички  тъкани , при които  се набл­  
юдават  макроскопски  патологични  изменения . Както  е 
предложено  в процедурите  за чифтосване , размножителните  
органи  на животните , при които  има съмнение  за безплодие , 
могат  да бъдат  подложени  на микроскопско  изследване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 509
 
2. ДАННИ  
Данните  могат  да бъдат  обобщени  в табличен  вид, като за всяка  
изпитвана  група  са показани  броят  на животните  в началото  на 
изпитването , броят  на фертилните  мъжки  животни , броят  на 
бременните  женски  животни , типовете  промени  и процентът  
на животните , които  демонстрират  всеки  тип промяна . 
Когато  е възможно , числовите  резултати  трябва  да бъдат  
оценени  с помощта  на подходящ  статистически  метод . Може  
да се използва  всеки  признат  статистически  метод . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следната  
информация : 
— използван  вид/порода , 
— данни  за токсичния  отговор  по пол и доза, включително  
плодовитост , бременност  и жизнеспособност , 
— време  на смъртта  по време  на изпитването  или дали  
животните  оживяват  до времето  на планираното  пожертване  
или до прекратяване  на изпитването , 
— таблица , представяща  теглото  на всяко  котило , средното  
тегло  на новородените  животни  и индивидуалните  тегла  на 
новородените  животни  при прекратяване  на изпитването , 
— токсичните  или други  ефекти  върху  размножаването , 
потомството  и постнаталния  растеж , 
— деня  на наблюдение  на всеки  абнормен  признак  и неговото  
последващо  развитие , 
— данни  за телесното  тегло  за животните  от поколение  Р, 
— резултати  от аутопсията , 
— подробно  описание  на всички  резултати  от микроскопските  
изследвания , 
— статистическа  обработка  на резултатите , където  е необ­  
ходимо , 
— обсъждане  на резултатите , 
— интерпретиране  на резултатите . 
3.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАН  
Вижте  Общо  въведение  част Б. 
4. ПОЗОВАВАНИЯ  
Вижте  Общо  въведение  част Б. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 510
 
Б.35. ИЗПИТВАНЕ  ЗА РЕПРОДУКТИВНА  ТОКСИЧНОСТ  В ДВЕ  
ПОКОЛЕНИЯ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на метод  ОИСР  ТG 416 (2001).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  за оценка  на репродуктивната  токсичност  в две 
поколения  е разработен  с цел да се проучат  ефектите  на 
изпитваното  вещество  върху  състоянието  и функцията  на 
женската  и мъжката  полова  система , включително  функцията  
на гонадите , естралния  цикъл , поведението  при чифтосване , 
зачеването , бременността , раждането , лактацията  и отбиването , 
както  и върху  растежа  и развитието  на потомството . Също  така 
чрез това изпитване  се получава  информация  за ефектите  на 
изпитваното  вещество  върху  неонаталната  болестност  и 
смъртност , както  и предварителни  данни  за пренаталната  и 
постнаталната  токсичност  за развитието . Данните , получени  от 
това изпитване , дават  насока  за провеждането  на по-нататъшни  
изпитвания . Освен  растежа  и развитието  на поколение  F1 
посредством  този метод  се оценяват  състоянието  и функцията  
на женската  и мъжката  полова  система , както  и растежът  и 
развитието  на поколение  F2. По-нататъшна  информация  за токс­  
ичността  за развитието  и функционалните  нарушения  може  да 
се получи , като към протокола  на този метод  се включат  
допълнителни  процедури , взаимствани  от методите  за оценка  
на токсичността  за развитието  и/или невротоксичността  за 
развитието , когато  това е необходимо . Тези  ефекти  могат  да се 
изследват  и в отделни  проучвания , като се приложат  съотв­  
етните  методи . 
1.2. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество  се въвежда  в различни  дози  на няколко  
групи  мъжки  и женски  животни . Мъжките  животни  от родит­  
елското  поколение  (поколение  Р) трябва  да се третират  по време  
на растежа  и в продължение  на най-малко  един  пълен  цикъл  на 
сперматогенеза  (приблизително  56 дни при мишки  и 70 дни при 
плъхове ), за да се установят  неблагоприятните  ефекти  върху  
сперматогенезата . Ефектите  върху  сперматозоидите  се откриват  
чрез изследване  на редица  параметри  (напр . морфология  и 
подвижност  на сперматозоидите ), както  и чрез подробно  хист­  
опатологично  изследване  на тъканни  препарати . Ефектите  върху  
мъжките  животни  от поколение  Р не е необходимо  да се 
оценяват , когато  съществуват  данни  за сперматогенезата  от 
предишни  проучвания  при многократно  постъпване  на 
изпитваното  вещество  за достатъчно  продължителен  период , 
например  данни  от 90-дневно  изпитване . Въпреки  това се 
препоръчва  да се съхранят  проби  от сперматозоидите  от 
поколение  Р или техните  дигитални  образи , за да може  по- 
късно  да се извърши  оценка , ако е необходимо . Женските  
животни  от поколение  Р трябва  да се третират  по време  на 
растежа , както  и в продължение  на няколко  пълни  естрални  
цикъла , за да се установят  неблагоприятните  ефекти  на 
изпитваното  вещество  върху  нормалното  протичане  на 
естралния  цикъл . Изпитваното  вещество  се въвежда  на 
животните  от родителското  (Р) поколение  по време  на чифт­  
осването  и настъпилата  в резултат  от това бременност , както  и 
след  раждането  до отбиването  на потомството  им (поколение  
F1). След  отбиването  веществото  започва  да се въвежда  на 
животните  от поколение  F1 по време  на техния  растеж  до 
достигане  на полова  зрялост , чифтосването  и възпроизводството  
им до отбиването  на потомството  им (поколение  F2).  
При всички  животни  се провежда  клинично  наблюдение  и 
патологоанатомично  изследване  за установяване  на токсични  
ефекти , като особено  внимание  се обръща  върху  състоянието  
и функцията  на мъжката  и женска  полова  система  и върху  
растежа  и развитието  на потомството . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 511
 
1.3. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.3.1.  Избор  на вида  опитни  животни  
Предпочитаният  вид опитни  животни  е плъх . Използването  на 
други  животински  видове  трябва  да се обоснове . В тези случаи  
се налага  да се внесат  съответни  модификации  в метода  за 
изпитване . Не трябва  да се използват  породи  с ниска  
плодовитост  или породи , за които  е характерна  висока  честота  
на вродените  аномалии . Различията  в индивидуалните  стойности  
на телесната  маса  на животните  в началото  на проучването  
трябва  да бъдат  минимални  и да не превишават  20 % от 
средната  телесната  маса  за всяка  група  по пол. 
1.3.2.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Температурата  във вивариума  трябва  да бъде  22 o С (± 3  o ). Стой­  
ностите  на относителната  влажност  не трябва  да бъдат  по-ниски  
от 30 % и е желателно  да не превишават  70 % освен  при 
почистване  на помещението . Целта  трябва  да бъде  относит­  
елната  влажност  да се поддържа  в интервала  50—60 %. Освет­  
лението  трябва  да бъде  изкуствено , като се редуват  12 часа 
светлина  и 12 часа тъмнина . За храненето  се използват  
обичайните  лабораторни  диети  при неограничен  достъп  до 
вода  за пиене . В определени  случаи  изборът  на диетата  може  
да зависи  от това, че е необходимо  веществото  да се смеси  по 
подходящ  начин  и да се въведе  с храната . 
Животните  могат  да се поставят  в индивидуални  клетки  или да 
се разпределят  на малки  групи  от един  и същи  пол в общи  
клетки . Чифтосването  трябва  да се извърши  в клетки , 
подходящи  за тази цел. След  като се открият  признаците  на 
копулация , чифтосаните  женски  животни  трябва  да се поставят  
в индивидуални  клетки , подходящи  за раждане  или отглеждане  
на малките . Друга  възможност  е чифтосаните  плъхове  да се 
разпределят  в малки  групи  и да се отделят  в самостоятелни  
клетки  един  или два дни преди  раждането . Когато  наближи  
раждането , в клетките  на бременните  животни  трябва  да бъдат  
поставени  подходящи  материали  за гнездо . 
1.3.3.  Подготовка  на опитните  животни  
Трябва  да се използват  здрави  млади  животни , които  
предварително  са се аклиматизирали  към лабораторните  
условия  в продължение  най-малко  на 5 дни и не са подлагани  
на други  изпитвания . Опитните  животни  трябва  да се опишат  по 
отношение  на вид, порода , източник  за доставка , пол, телесна  
маса  и/или възраст . Трябва  да се знае кои животни  са от едно  и 
също  котило , за да се избегне  чифтосването  между  тях. 
Животните  трябва  да бъдат  разпределени  на принципа  на 
случайния  подбор  към контролната  или експонираните  групи  
(препоръчва  се да се извърши  стратифициране  по телесна  
маса ). Клетките  трябва  да бъдат  подредени  по такъв  начин , че 
да се намалят  до минимум  ефектите , които  биха  могли  да 
възникнат  в резултат  от разположението  им. Всяко  животно  
трябва  да бъде  обозначено  с индивидуален  идентификационен  
номер . Животните  от поколение  Р се номерират , преди  да 
започне  третирането  с изпитваното  вещество . Животните  от 
поколение  F1, които  са избрани  за чифтосване , се номерират  
при отбиването  им. В документацията  на изпитването  трябва  
да се обозначи  от кое котило  произлиза  всяко  от избраните  за 
чифтосване  F1 животни . Освен  това във връзка  с измерването  на 
индивидуалната  телесна  маса  или провеждането  на функц­  
ионални  изследвания  се препоръчва  новородените  да получат  
индивидуална  идентификация  възможно  най-скоро  след  
раждането . 
Животните  от родителското  (Р) поколение  трябва  да бъдат  на 
възраст  5—9 седмици  в началото  на третирането . Стойностите  
на телесната  маса  и възрастта  на всички  животните  в опитните  
групи  трябва  да бъдат  възможно  най-близки . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 512
 
1.4. ПРОЦЕДУРА  
1.4.1.  Брой  и пол на животните  
Контролната  група  и всички  експонирани  групи  трябва  да 
включват  достатъчно  голям  брой  животни , тъй като е 
желателно  по време  на раждането  или близо  до термина  броят  
на бременните  животни  във всяка  група  да бъде  не по-малко  от 
20. За вещества , които  предизвикват  нежелани  ефекти  (например  
стерилитет , изразена  токсичност  при най-високата  доза), това 
може  да не бъде  възможно . Целта  е да се предизвикат  дост­  
атъчно  на брой  бременности , за да може  да се извърши  
адекватна  оценка  на потенциала  на веществото  да въздейства  
върху  фертилитета , бременността , поведението  на майките , 
кърменето , растежа  и развитието  на животните  от поколение  
F1 от зачеването  до достигането  на полова  зрялост , и развитието  
на тяхното  потомство  (F2) до отбиването  му. Затова  когато  не се 
достигне  желаният  брой  на бременните  животни  (т.е. 20), не във 
всички  случаи  проучването  се приема  за невалидно . Преценката  
трябва  да се направи  за всяко  проучване  поотделно  в зависимост  
от конкретния  случай . 
1.4.2.  Подготовка  на дозите  
Препоръчва  се изпитваното  вещество  да се въвежда  по орален  
път (с диетата , водата  за пиене  или чрез гаваж ), освен  когато  се 
прецени , че е по-подходящо  да се използва  друг  път на 
въвеждане  (напр . дермален  или инхалаторен ). 
Когато  е необходимо , изпитваното  вещество  се разтваря  или 
суспендира  в подходящ  носител . Препоръчва  се първо  да се 
прецени  дали  може  се използва  воден  разтвор  или суспензия . 
Когато  това не е приложимо , като втора  възможност  трябва  да 
се обсъди  използването  на разтвор  или емулсия  в олио  (напр . 
царевично  олио ) и след  това използването  на други  носители . 
Когато  се използват  други  носители  освен  водата , трябва  да се 
познават  токсикологичните  свойства  на носителя . Трябва  да 
бъде  определена  стабилността  на изпитваното  вещество  в 
носителя . 
1.4.3.  Дози  
Трябва  да се приложат  най-малко  три дози . Успоредно  с 
експонираните  групи  трябва  да се наблюдава  и нетретирана  
контролна  група . С изключение  на случаите , когато  се налагат  
ограничения  във връзка  с физичните , химичните  или биолог­  
ичните  свойства  на изпитваното  вещество , най-високата  доза 
трябва  да бъде  подбрана  така, че да предизвиква  прояви  на 
токсичност , но не и смърт  или тежко  страдание . Когато  
въпреки  очакванията  настъпят  смъртни  случаи , приблизителната  
граница , под която  смъртността  в родителското  поколение  (Р) се 
приема  за допустима , е 10 %. Дозите  трябва  да се подберат  в 
намаляваща  последователност  по такъв  начин , че да се проявят  
всички  ефекти , свързани  с прилагането  на изпитваното  
вещество , и да се установят  нива , при които  не се наблюдава  
неблагоприятен  ефект  (NOAEL). За определяне  на последов­  
ателно  намаляващите  дози  в повечето  случаи  е най-подходящо  
всяка  доза да намалява  два до четири  пъти  спрямо  най-близката  
по-висока  доза. Включването  на допълнителна  четвърта  
експонирана  група  често  е за предпочитане  пред  използването  
на твърде  големи  интервали  между  дозите  (напр . намаление  
повече  от 10 пъти ). За проучвания , при които  веществото  се 
въвежда  с диетата , намалението  спрямо  най-близката  доза не 
трябва  да бъде  повече  от 3 пъти . Дозите  трябва  да се изберат  
след  преценка  на всички  съществуващи  данни  за токсичността , 
особено  на резултатите  от изпитвания  при многократно  
постъпване . Всички  налични  данни  за метаболизма  и кинетиката  
на изпитваното  химично  съединение  или подобни  химични  
вещества  също  трябва  да се вземат  под внимание . В допълнение  
тази информация  се използва  също  и при обосновката  на 
схемата  за третиране . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 513
 
Контролната  група  не се третира  или се третира  с носителя  в 
случаите , когато  при въвеждането  на изпитваното  вещество  се 
използва  носител . С изключение  на третирането  с изпитваното  
вещество  животните  в контролната  група  трябва  да се поставят  
при същите  условия  и да се подлагат  на същите  манипулации , 
както  животните  от експонираните  групи . Когато  се използва  
носител , той се въвежда  на животните  от контролната  група  в 
най-голямото  количество , което  се въвежда  на експонираните  
животни . Когато  изпитваното  вещество  се въвежда  с диетата  и 
предизвиква  намален  прием  на храна  или понижено  усвояване  
на храната , може  да се прецени  като необходимо  използването  
на контролна  група  от животни , които  да приемат  същото  
количество  храна , както  експонираните  животни . Друг  
възможен  подход  вместо  включването  на такава  контролна  
група  е използването  на данни  от контролирани  проучвания  на 
ефекта  от понижената  консумация  на храна  върху  параметрите  
на репродукцията . 
Трябва  да се отчетат  следните  характеристики  на носителя  или 
други  добавки , ако се прилагат  такива : ефекти  върху  
резорбцията , разпределението , метаболизма  или ретенцията  на 
изпитваното  вещество  в организма ; ефекти  върху  химичните  
свойства  на изпитваното  вещество , които  могат  да повлияят  
върху  токсикологичните  му характеристики ; ефекти  върху  конс­  
умацията  на храна  или вода  или върху  хранителния  статус  на 
животните . 
1.4.4.  Лимитиращо  изпитване  
Може  да се прецени , че извършването  на изпитването  в пълен  
обем  с няколко  дози  не е необходимо , когато  при орално  
изпитване  по описаната  в този метод  процедура  с едно  ниво  
на експозиция  (орална  дневна  доза равна  или по-висока  от 
1 000 mg/kg т.м. или еквивалентно  процентно  съдържание  в 
диетата  или питейната  вода ) не се наблюдават  токсични  
ефекти  при родителските  животни  или потомството  им и 
когато  не се очакват  прояви  на токсичност  въз основа  на 
данните  за вещества  с подобна  химична  структура  и/или мета­  
болизъм . При лимитиращото  изпитване  може  да се приложи  и 
по-висока  орална  доза, когато  това се налага  във връзка  с нивото  
на експозиция  за населението . При другите  пътища  на 
въвеждане  – инхалаторен  или дермален , физикохимичните  
свойства  на изпитваното  вещество , като например  разтворим­  
остта , често  могат  да повлияят  и да ограничат  максимално  
достижимото  ниво  на експозиция . 
1.4.5.  Въвеждане  на дозите  
Третирането  на животните  с изпитваното  вещество  трябва  да се 
извършва  всеки  ден (7 дни в седмицата ). Желателно  е 
въвеждането  да става  по орален  път (чрез диетата , питейната  
вода  или гаваж ). Когато  се използва  друг  път на въвеждане , 
изборът  трябва  да се обоснове . В този случай  може  да се 
наложи  въвеждането  на модификации  в представения  метод . 
Въвеждането  трябва  да се извършва  по един  и същи  начин  на 
всички  животни  през посочения  в метода  период  на изпитването . 
Когато  изпитваното  вещество  се въвежда  чрез гаваж , гаважът  
трябва  да се извърши  посредством  стомашна  сонда . Максим­  
алният  обем  на течностите , който  може  да се въведе  еднократно , 
е 1 ml/100 g т.м. (0,4 ml/100 g т.м. при носител  царевично  олио ), 
освен  в случаите , когато  се прилагат  водни  разтвори . Тогава  
обемът  може  да достигне  2 ml/100 g т.м. Целта  е веществото  да 
се въвежда  в постоянен  обем  при всички  използвани  дози . 
Промените  в обема  трябва  да бъдат  сведени  до минимум , като 
вместо  него се променят  концентрациите . Това  правило  не се 
прилага  само  при дразнещи  и корозивни  вещества , тъй ефектът  
им се засилва  при по-високи  концентрации . При изпитвания  чрез 
гаваж  новородените  обикновено  са експонирани  индиректно  чрез 
майчиното  мляко  до отбиването  им, когато  започва  директното  
въвеждане  на веществото . При въвеждане  чрез храната  или 
питейната  вода  малките  получават  изпитваното  вещество  и 
директно , когато  започнат  да се хранят  самостоятелно  през 
последната  седмица  от периода  на лактация . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 514
 
Когато  веществото  се въвежда  чрез храната  или питейната  вода , 
то трябва  да се прилага  в дози , които  не влияят  върху  
нормалното  хранене  и водния  баланс . Когато  изпитваното  
вещество  се прилага  с диетата , нивото  на експозиция  за 
дадена  група  може  да се изрази  като определена  фиксирана  
концентрация  в храната  (ррm) или като фиксирана  дневна  доза 
спрямо  телесната  маса  на животното . Трябва  да се посочи  кой 
от двата  начина  е приложен . Въвеждането  чрез гаваж  се 
извършва  всеки  ден приблизително  по едно  и също  време , 
като количеството  от веществото , което  се въвежда  на всяко  
животно , се определя  поне  веднъж  седмично  спрямо  телесната  
му маса , за да се поддържа  постоянно  нивото  на експозиция , 
съответстващо  на избраната  доза. При определяне  на колич­  
еството , което  се въвежда  чрез гаваж , спрямо  телесната  маса , 
трябва  да се вземат  под внимание  и данните  за влиянието  на 
плацентата  върху  разпределението  на веществото . 
1.4.6.  Експериментални  схеми  
Мъжките  и женските  животни  от родителското  (Р) поколение  
трябва  да започнат  да се третират  всеки  ден на възраст  между  
5 и 9 седмици . Ежедневното  третиране  на мъжките  и женските  
животни  от поколение  F1 започва  при отбиването  им. Когато  
изпитваното  вещество  се прилага  чрез храната  или питейната  
вода , трябва  да се има предвид , че животните  от поколение  F1 
може  да са били  експонирани  директно  още през периода  на 
лактация . За Р и F1 животните  от двата  пола  третирането  
трябва  да продължи  най-малко  10 седмици  преди  периода  на 
чифтосване . Третирането  продължава  и при двата  пола  по 
време  на двуседмичния  период  на чифтосване . Мъжките  
животни  трябва  да бъдат  убити  по хуманен  начин  и 
аутопсирани , когато  се прецени , че с оглед  оценката  на репрод­  
уктивните  ефекти  не е необходимо  изпитването  върху  тях да 
продължава  по-дълго . За женските  животни  от родителското  
(Р) поколение  третирането  продължава  по време  на бремен­  
ността  и се прекратява  при отбиването  на потомството  F1. Въз 
основа  на наличната  информация  за изпитваното  вещество , 
включително  съществуващите  данни  за токсичността , мета­  
болизма  или биологичната  кумулация , се преценява  дали  са 
необходими  промени  в схемата  на третиране . Дозата  за всяко  
животно  се определя  най-често  въз основа  на последното  
измерване  на индивидуалната  телесна  маса . Въпреки  това 
трябва  да се подхожда  предпазливо , когато  се определят  
дозите  през последната  третина  от бременността . 
Третирането  на мъжките  и женски  животни  от поколение  Р и F1 
трябва  да продължи  до убиването  им. Всички  полово  зрели  мъжки  
и женски  Р и F1 животни  трябва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  
начин , когато  се прецени , че с оглед  оценката  на репродуктивните  
ефекти  не е необходимо  изпитването  върху  тях да продължава  по- 
дълго . Животните  от поколение  F1, които  не са избрани  за чифт­  
осване , и всички  животни  от поколение  F2 трябва  да бъдат  
умъртвени  по хуманен  начин  след отбиването  им. 
1.4.7.  Процедура  на чифтосването  
1.4.7.1.  Чифтосване  на животните  от родителското  (Р) поколение  
Всяко  женско  животно , определено  за чифтосване , се поставя  
заедно  с едно  мъжко  животно , третирано  със същата  доза (чифт­  
осване  1:1), докато  се осъществи  копулация  или до изтичането  
на 2 седмици . Всеки  ден женските  животни  трябва  да се прег­  
леждат  за наличие  на сперма  или вагинална  запушалка . Денят , в 
който  се установи  наличие  на сперматозоиди  или вагинална  
запушалка , се определя  като ден 0 от бременността . Когато  
чифтосването  е неуспешно , може  да се извърши  повторно  чифт­  
осване  на женските  животни  с мъжки  животни  с доказан  
фертилитет  от същата  опитна  група . Животните  от всяка  
двойка , определена  за чифтосване , трябва  да бъдат  ясно  идент­  
ифицирани  в данните  от изпитването . Чифтосването  между  
животни  от едно  и също  котило  трябва  да се избягва . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 515
 
1.4.7.2.  Чифтосване  на животните  от поколение  F1 
За чифтосването  на F1 животните  и получаването  на поколение  
F2 веднага  след  отбиването  се избират  най-малко  по едно  мъжко  
и едно  женско  животно  от всяко  котило , които  ще се чифтосат  с 
по едно  животно  от друго  котило , третирано  със същата  доза. 
Когато  не се откриват  значителни  различия  в телесната  маса  или 
вида  между  животните  от дадено  котило , животните  за чифт­  
осването  трябва  да се определят  на принципа  на случайния  
подбор . Когато  се наблюдават  такива  различия , се подбират  
представителите  от всяко  котило , които  са в най-добро  
състояние . На практика  се препоръчва  този подбор  да се 
извърши  въз основа  на стойностите  на телесната  маса , но в 
някои  случаи  може  да бъде  по-подходящо  животните  да се 
изберат  според  външния  им вид. F1 животните  не трябва  да се 
чифтосват , преди  да достигнат  напълно  полова  зрялост . 
Двойките , при които  не е настъпило  оплождане  и бременност , 
трябва  да се изследват , за да се определи  възможната  причина  за 
безплодието . Оценката  на състоянието  им може  да включва  
процедури  като повторно  чифтосване  с други  мъжки  или 
женски  животни  с доказан  фертилитет , микроскопско  
изследване  на репродуктивните  органи  и изследване  на 
естралния  цикъл  или сперматогенезата . 
1.4.7.3.  Второ  чифтосване  
В някои  случаи , като например  при промени  в броя  на 
животните  в котилото , свързани  с експозицията  на изпитваното  
вещество , или при появата  на недостатъчно  ясно  изразени  
ефекти  при първото  чифтосване , се препоръчва  двойките  
полово  зрели  животни  от поколение  Р или F1 да се чифтосат  
повторно , за да заченат  второ  котило . Препоръчва  се женските  
или мъжки  животни , които  не са дали  потомство , да се чифтосат  
повторно  с животни  от противоположния  пол с доказан  
фертилитет . Когато  се прецени , че е необходимо  да се получи  
второ  котило  от Р и/или F1 животните , повторното  чифтосване  
се извършва  приблизително  една  седмица  след  отбиването  на 
последното  котило . 
1.4.7.4.  Брой  на животните  в котилото  
На животните  трябва  да се даде  възможност  да родят  нормално  
и да отгледат  потомството  си до отбиването . Може  да се 
извърши  стандартизиране  на броя  на животните  във всяко  
котило , но това не е задължителна  процедура . Когато  се 
извършва  стандартизиране , използваният  метод  за това трябва  
да се опише  подробно . 
1.5. НАБЛЮДЕНИЯ  
1.5.1.  Клинични  наблюдения  
Клиничното  наблюдение  на животните  се извършва  всеки  ден. 
Когато  въвеждането  става  чрез гаваж , при наблюдението  трябва  
да се обърне  особено  внимание  на периода  след  третирането , 
през който  се очаква  появата  на най-силно  изразени  ефекти . 
Трябва  да се опишат  промените  в поведението , признаците  на 
трудно  или удължено  раждане , както  и всички  симптоми  на 
токсично  действие . Освен  това най-малко  веднъж  седмично  
трябва  да се извърши  по-подробен  преглед  на всяко  животно . 
Подходящо  е прегледът  да се провежда , когато  животните  се 
претеглят . Огледът  на всички  животни  за наличие  на 
патологични  клинични  симптоми  и смъртни  случаи  се 
провежда  два пъти  дневно , а през двата  неработни  дни в края  
на седмицата  — веднъж  дневно , когато  се прецени , че това е 
достатъчно . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 516
 
1.5.2.  Родителски  животни  — телесна  маса  и консумация  на 
храна /вода  
Р животните  и F1 животните , определени  за чифтосване , трябва  
да се претеглят  на първия  ден от началото  на третирането , а 
след  това най-малко  веднъж  седмично . Женските  Р животни  и 
женските  F1 животни , определени  за чифтосване , трябва  да се 
претеглят  като минимум  в ден 0, 7, 14, и 20 или 21 от гест­  
ацията , по време  на лактацията  в същите  дни, когато  се 
претеглят  котилата , както  и в дните , когато  животните  се 
убиват . Тези  наблюдения  трябва  да се описват  индивидуално  
за всяко  полово  зряло  животно . По време  на периода  преди  
чифтосването  и на бременността  количеството  на консумираната  
храна  трябва  да се измерва  най-малко  веднъж  седмично . Конс­  
умацията  на вода  трябва  да се измерва  най-малко  веднъж  
седмично , когато  изпитваното  вещество  се въвежда  чрез 
питейната  вода . 
1.5.3.  Естрален  цикъл  
Продължителността  и протичането  на естралния  цикъл  се 
оценяват  при женските  животни  от поколение  Р и F1 чрез 
изследване  на вагинални  цитонамазки  преди  чифтосването  и 
по желание  през периода  на чифтосването  до момента , когато  
се установят  признаците  за извършено  чифтосване . Материалът  
за цитонамазката  се взима  внимателно  от вагината /цервикса , за 
да не се допусне  увреждане  на лигавицата  и последващо  
индуциране  на псевдобременност  (1). 
1.5.4.  Параметри  за оценка  на състоянието  на сперматозоидите  
След  убиването  масата  на тестисите  и епидидимите  на всички  
мъжки  Р и F1 животни  се измерва  и записва . Единият  тестис  и 
епидидим  от всяко  животно  се запазват  за хистопатологично  
изследване  (виж точки  1.5.7 и 1.5.8.1). Вторият  тестис  и 
епидидим  на най-малко  10 мъжки  животни  от всяка  опитна  
група  от поколение  Р and F1 се използват  за изброяване  
съответно  на сперматидите , резистентни  на хомогенизация , и 
на сперматозоидите  в опашката  на епидидима . От същите  
животни  се вземат  сперматозоиди  от опашката  на епидидима  
или vas deferens  и се изследват  подвижността  и морфологията  
им. Когато  се наблюдават  ефекти , свързани  с третирането , или 
когато  са налице  данни  от други  проучвания  за възможни  
ефекти  върху  сперматогенезата , оценката  на състоянието  на 
сперматозоидите  трябва  да се извърши  при всички  мъжки  
животни  от всяка  експонирана  група . Когато  липсват  такива  
наблюдения  или данни , може  да се изследват  проби  само  от 
мъжките  Р и F1 животни  от контролната  група  и най-силно  
експонираната  група . 
Трябва  да се определи  общият  брой  на тестикуларните  
сперматиди , резистентни  на хомогенизиране , и на спермато­  
зоидите  в опашката  на епидидима  (2)(3). Броят  на спермато­  
зоидите  в опашката  на епидидима  може  да се изчисли  въз 
основа  на концентрацията  и обема  на сперматозоидите  в 
суспензията , използвана  за извършване  на качествените  набл­  
юдения , както  и на броя  на сперматозоидите , отделени  чрез 
раздробяване  и/или хомогенизиране  на останалите  тъкани  от 
опашката  на епидидима . Изброяването  на сперматозоидите  в 
пробите  от избраните  мъжки  животни  от всички  опитни  групи  
се извършва  веднага  след  убиването  им. Това  не е необходимо , 
когато  пробите  се заснемат  на видеозапис  или дигитално , или 
когато  се замразяват  и анализират  по-късно . Когато  пробите  са 
съхранени  или заснети , анализът  им може  да започне  с 
контролната  група  и най-силно  експонираната  група . Ако не 
се установяват  ефекти , свързани  с третирането  (например  
ефекти  върху  броя , подвижността  или морфологията  на 
сперматозоидите ), не е необходимо  да се анализират  пробите  
от останалите  експонирани  групи . Когато  при най-силно  
експонираната  група  се откриват  ефекти , свързани  с 
третирането , се анализират  и пробите  от групите  с по-ниски  
дози . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 517
 
Веднага  след  убиването  на животните  подвижността  на 
сперматозоидите  от епидидима  (или ductus deferens ) трябва  да 
се оцени  или да се направи  видеозапис  на пробата . Спермато­  
зоидите  трябва  да се отделят  с минимални  увреждания  и 
пробата  да се разреди  за анализ  на подвижността , който  се 
извършва  чрез подходящи  методи  (4). Относителният  дял (в 
проценти ) на прогресивно  подвижните  сперматозоиди  трябва  
да се определи  субективно  или обективно . Когато  се извършва  
компютърен  анализ  на движението  на сперматозоидите  (5)(6)(7) ­
(8)(9)(10), изчислението  на прогресивната  подвижност  зависи  от 
определените  от потребителя  прагове  за скорост  по средния  път 
и праволинейност  на движението  или линеен  индекс . По време  
на аутопсията  пробите  могат  да бъдат  заснети  на видеозапис  
(11) или по друг  начин . По-късно  те се анализират , като първон­  
ачално  се изследват  само  контролните  групи  и групите  с най- 
високата  доза от Р и F1 поколение . При наличие  на ефекти , 
свързани  с третирането , се изследват  и групите , експонирани  
на по-ниски  дози . Когато  не са заснети  на видеозапис  или 
дигитално , всички  проби  от всички  опитни  групи  се анализират  
по време  на аутопсията . 
Извършва  се морфологично  изследване  на сперматозоиди  от 
епидидима  (или vas deferens ). Сперматозоидите  (най-малко  200 
в една  проба ) се изследват  във фиксирани  влажни  препарати  
(12) и се класифицират  като нормални  или абнормни . Примери  
за морфологични  отклонения  са: слепване , наличие  на глави , 
отделени  от тялото  и опашката , промени  във формата  на 
главите  и/или опашките . Оценката  на пробите  от избраните  
мъжки  животни  от всички  експонирани  групи  трябва  да се 
извърши  веднага  след  убиване  на животните , или по-късно , 
чрез използването  на видео - или дигитални  записи . Намазките  
също  могат  да се анализират  по-късно , след  като се фиксират . В 
тези случаи  първо  може  да се извърши  оценка  на пробите  от 
контролната  група  и най-силно  експонираната  група . Когато  не 
се откриват  ефекти , свързани  с третирането  (например  ефекти  
върху  морфологията  на сперматозоидите ), не е необходимо  да се 
изследват  останалите  групи . Когато  при най-високата  доза се 
откриват  ефекти , свързани  с третирането , пробите  от групите , 
третирани  с по-ниски  дози , също  се анализират . 
Когато  някои  от посочените  по-горе параметри  за оценка  на 
състоянието  на сперматозоидите  вече са били  изследвани  по 
време  на проучване  на системната  токсичност  с продължит­  
елност  най-малко  90 дни, не е задължително  те да се 
изследват  повторно  в проучването  в две поколения . Препоръчва  
се, обаче , пробите  от сперматозоидите  на Р мъжките  животни  
или дигиталните  им образи  да бъдат  съхранени , за да може  по- 
нататък  да се извърши  оценка , ако това е необходимо . 
1.5.5.  Потомство  
Всяко  котило  трябва  да бъде  прегледано  възможно  най-скоро  
след  раждането  (ден 0 от периода  на лактация ), за да се 
установи  броят  и полът  на новородените , броят  на 
мъртвородените  и на живите , както  и наличието  на външни  
аномалии . Когато  в ден 0 сред  новородените  има мъртви  
животни  и труповете  им не са мацерирани , желателно  е те да 
се прегледат  за установяване  причината  за смъртта  и за наличие  
на дефекти  и да се запазят . Живите  новородени  трябва  да се 
преброят  и всяко  от тях да се претегли  в деня  на раждането  
(ден 0 от периода  на лактация ) или в ден 1. По-нататък  
телесната  им маса  трябва  да се измерва  редовно  в определени  
дни, например  в ден 4, 7, 14, и 21 от периода  на лактация . 
Физическите  аномалии  или отклоненията  в поведението , уста­  
новени  при майките  или в потомството , трябва  да се опишат . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 518
 
Основният  показател  за физическото  развитие  на потомството , 
който  се проследява  и регистрира , е прирастът  на телесната  
маса . Други  параметри  на физическото  развитие  (например  
отлепване  на ушната  мида , отваряне  на очите , пробиване  на 
зъбите , израстване  на козина ) могат  да дадат  допълнителна  
информация , но е желателно  тези данни  да се оценяват  в 
контекста  на данните  за половото  съзряване  (например  възраст  
и телесна  маса  при отварянето  на вагината  или отделянето  на 
препуциума ) (13). Препоръчва  се извършването  на функц­  
ионални  изследвания  (например  за моторна  активност , 
сензорна  функция , рефлексна  дейност ) върху  поколение  F1 
преди  и/или след  отбиването , по-специално  на изследвания , 
свързани  с половото  съзряване , когато  такива  изследвания  не 
са включени  в отделни  проучвания . Възрастта , при която  
настъпва  отварянето  на вагината  или отделянето  на препуциума , 
трябва  да се определи  за F1 животните , избрани  за чифтосване . 
Когато  са установени  данни  за промяна  в съотношението  между  
двата  пола  или във времето  за настъпване  на полова  зрялост  при 
животните  от поколение  F1, на постнатален  ден 0 трябва  да се 
измери  разстоянието  между  ануса  и половите  органи  при 
новородените  от поколение  F2. 
Функционалните  изследвания  могат  да не се извършват  в групите , 
при които  се откриват  ясно  изразени  признаци  на неблагоприятни  
ефекти  (например  значително  понижение  в телесната  маса  и т.н.). 
Когато  се провеждат  функционални  изследвания , те не трябва  да 
се извършват  върху  малките , избрани  за чифтосване . 
1.5.6.  Макроскопски  оглед  при аутопсиране  
При убиването  или смъртта  по време  на изпитването  се 
извършва  макроскопски  оглед  за наличие  на структурни  
аномалии  или патологични  промени , като се обхващат  всички  
родителски  животни  (Р и F1), всички  малки  с външни  аномалии  
или клинични  симптоми , както  и по едно  случайно  подбрано  
малко  от всеки  пол и всяко  котило  на поколение  F1 и F2. 
Особено  внимание  при огледа  трябва  да се обърне  на органите  
на половата  система . Малките  от поколение  F1 и F2, които  са 
били  в терминално  състояние  и са убити  по хуманен  начин , или 
са умрели , но труповете  им не са мацерирани , трябва  да се 
изследват  за възможни  дефекти  и/или причини  за смъртта . 
Труповете  им трябва  да се запазят . 
Матките  на всички  женски  животни , родили  за първи  път, 
трябва  да се изследват  за наличие  и брой  на места  на импла­  
нтация . Изследването  трябва  да се проведе  така, че да не се 
попречи  на извършването  на хистопатологично  изследване . 
1.5.7.  Органна  маса  
При всички  родителски  Р и F1 животни  в момента  на убиването  
трябва  да се измери  телесната  маса  и масата  на следните  органи  
(всеки  от чифтните  органи  трябва  да се претегли  отделно ): 
— матка , яйчници ; 
— тестиси , епидидими  (целият  епидидим  и отделно  опашката  
на епидидима ); 
— простатна  жлеза ; 
— семенни  мехурчета  с коагулиращите  жлези , течното  им 
съдържимо  и простатата  жлеза  (измерват  се заедно ); 
— мозък , черен  дроб , бъбреци , слезка , хипофизна , щитовидна  и 
надбъбречни  жлези , познати  критични  органи . 
Телесната  маса  при настъпване  на смъртта  трябва  да бъде  
измерена  за малките  от поколение  F1 и F2, които  са избрани  
за аутопсиране . Трябва  да бъдат  претеглени  следните  органи  от 
едно  случайно  подбрано  малко  от всеки  пол и от всяко  котило  
(виж точка  1.5.6): мозък , слезка  и тимус . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 519
 
Резултатите  от макроскопския  оглед  и измерването  на органната  
маса  трябва  да се оценяват  в контекста  на наблюденията , 
проведени  по време  на други  изпитвания  при многократно  
постъпване  на веществото , когато  това е възможно . 
1.5.8.  Хистопатологично  изследване  
1.5.8.1.  Родителски  животни  
Следните  органи  и тъкани  от родителските  Р и F1 животни  или 
репрезентативни  проби  от тях трябва  да се фиксират  и съхранят  
в подходяща  среда  за провеждане  на хистопатологично  
изследване : 
— вагина , матка  (заедно  с цервикса ) и яйчници  (съхранени  в 
подходящ  фиксатор ); 
— един  тестис  (съхранен  във фиксатор  на Воuin или друг  
подобен  фиксатор ), един  епидидим , семенни  мехурчета , 
простатна  и коагулираща  жлеза ; 
— критичен  орган /органи , установени  при предишни  
проучвания , от всички  Р и F1 животни , избрани  за чифт­  
осване . 
Пълно  хистопатологично  изследване  на съхранените  органи  и 
тъкани , изброени  по-горе, трябва  да бъде  направено  за всички  
Р и F1 животни  от контролната  и най-силно  експонираната  
група , избрани  за чифтосване . По желание  може  да се 
извърши  изследване  на яйчниците  на животните  от Р поколение . 
Органите , при които  се установяват  промени , свързани  с 
третирането , трябва  да бъдат  изследвани  също  така и при 
животните  от групите  с най-ниската  и междинната  доза/дози , 
за да може  да се установи  NOAEL. Освен  това на хистопат­  
ологично  изследване  трябва  да бъдат  подложени  репрод­  
уктивните  органи  на животните  от групите  с най-ниската  доза 
и междинната  доза/дози , при които  има съмнение  за понижен  
фертилитет , например  тези, при които  чифтосването , 
оплождането  или зачеването  са били  неуспешни , тези, които  
не са родили  здраво  потомство , както  и тези, при които  е 
нарушен  естралният  цикъл  или се установяват  промени  в броя , 
подвижността  или морфологията  на сперматозоидите . Всички  
макроскопски  лезии , като например  атрофия  или тумори , 
трябва  да се изследват  и хистопатологично . 
Трябва  да се извърши  подробно  хистопатологично  изследване  на 
тестисите  (напр . чрез използване  на фиксатора  на Воuin, 
заливане  с течен  парафин  и изготвяне  на напречни  срезове  с 
дебелина  4—5 μm), за да се открият  ефекти , свързани  с 
третирането , например  наличие  на мултинуклеарни  гигантски  
клетки , задържани  сперматиди , излющване  на сперматогенни  
клетки  в лумена  на извитите  семенни  каналчета  или липсващи  
слоеве  или видове  герминативни  клетки  (14). Пълното  
изследване  на епидидима  трябва  да обхваща  главата , тялото  и 
опашката , което  може  да се извърши , като се използва  надлъжен  
срез. Епидидимът  трябва  да се изследва  за наличие  на левк­  
оцитна  инфилтрация , промени  в броя  на отделните  видове  
клетки , аберантни  видове  клетки  и фагоцитоза  на спермато­  
зоидите . При изследването  на мъжките  полови  органи  може  да 
се използва  оцветяване  с хематоксилин  и ПАС -реакция . 
След  прекратяване  на лактацията  яйчникът  трябва  да съдържа  
примордиални  и зреещи  фоликули , както  и големи  жълти  тела. 
Чрез  хистопатологичното  изследване  може  качествено  да се 
установи  намаляване  в броя  на примордиалните  фоликули . 
Количествената  оценка  на популацията  от примордиални  
фоликули  се извършва  при женските  животни  от поколение  
F1. Броят  на животните , изборът  на срезове  и броят  на 
срезовете , включени  в изследваната  извадка , трябва  да бъдат  
обосновани  от статистическа  гледна  точка  във връзка  с 
използваната  процедура  за количествена  оценка . Изследването  
включва  определяне  на броя  на примордиалните  фоликули , 
които  могат  да се изброят  заедно  с малките  зреещи  фоликули . 
След  това броят  на фоликулите  се сравнява  между  контролните  
и експонираните  животни  (15) (16) (17) (18) (19).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 520
 
1.5.8.2.  Животни  след отбиването  
Тъкани  с видими  аномалии  и критични  органи  от всички  малки  
с външни  аномалии  или клинични  симптоми , както  и от едно  
случайно  подбрано  малко  от всяко  котило  и пол в поколение  F1 
и F2, което  не е било  избрано  за чифтосване , трябва  да бъдат  
фиксирани  и съхранени  в подходяща  среда  за хистопатологично  
изследване . Трябва  да се извърши  пълно  хистопатологично  
изследване  на съхранените  тъкани , като специално  внимание  
се обърне  на органите  на половата  система . 
2. ДАННИ  
2.1. ПРЕДСТАВЯНЕ  И ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Данните  трябва  да се представят , както  индивидуално  за всяко  
животно , така и обобщено  в табличен  вид, като за всяка  опитна  
група  и поколение  се посочи  броят  на животните  в началото  на 
изпитването , броят  на животните , умрели  по време  на 
изпитването  или умъртвени  по хуманни  съображения , времето  
на настъпване  на смъртта  или умъртвяването  по хуманни  
съображения , броят  на фертилните  животни , броят  на 
бременните  женски  животни , броят  на животните  със 
симптоми  на токсично  действие , характеристиката  на наблюда­  
ваните  симптоми , включително  време  на поява , продължит­  
елност  и степен  на изразеност , наблюденията  при родителските  
животните  и при потомството , хистопатологичните  промени , 
както  и всички  необходими  данни  за котилата . 
Резултатите , изразени  количествено , трябва  да се оценят  чрез 
подходящи  общоприети  статистически  методи . Статистическите  
методи  трябва  да се определят  във връзка  с дизайна  на 
проучването  и да се обосноват . При анализа  на данните  могат  
да се използват  статистически  модели  на връзката  „доза—от­ 
говор “. Отчетът  трябва  да включва  достатъчно  информация  за 
използваните  методи  и компютърните  програми , с които  е 
извършен  анализът , така че той да може  да се възпроизведе  и 
оцени  от независим  рецензент /статистик . 
2.2. ОЦЕНКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Оценката  на резултатите  от изпитването  за репродуктивна  токс­  
ичност  в две поколения  се извършва  въз основа  на наблюда­  
ваните  ефекти , включително  данните  от макроскопския  оглед  и 
хистопатологичното  изследване . Оценката  включва  
характеристика  на връзката  или установяване  на отсъствие  на 
връзка  между  дозата  на изпитваното  вещество  и наличието  
или отсъствието , честотата  и степента  на изразеност  на наблюда­  
ваните  промени , включително  макроскопски  лезии , ефекти  
върху  критични  органи , нарушения  във фертилитета , клинични  
симптоми , нарушения  в протичането  на бременността , 
раждането  и състоянието  на потомството , промени  в телесната  
маса , ефекти  върху  смъртността  и всички  други  токсични  
ефекти . Физикохимичните  свойства  на изпитваното  вещество  и 
токсикокинетичните  данни , когато  такива  са налице , трябва  да 
се вземат  под внимание  при оценката  на резултатите  от 
изпитването . 
При правилно  провеждане  на изпитването  за репродуктивна  
токсичност  трябва  достатъчно  обосновано  да се определи  
недействащо  ниво  и да се характеризират  неблагоприятните  
ефекти  върху  възпроизводството , раждането , лактацията , постн­  
аталното  развитие , включително  растежа  и половото  развитие . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 521
 
2.3. ИНТЕРПРЕТАЦИЯ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Чрез  изпитването  за оценка  на репродуктивната  токсичност  в 
две поколения  се осигурява  информация  за ефектите  на 
изпитваното  вещество  при многократно  постъпване  през 
всички  фази  на репродуктивния  цикъл . По-специално  
изпитването  дава информация  за параметрите  на възпроизводит­  
елната  функция , както  и на развитието , растежа , съзряването  и 
преживяемостта  на потомството . Резултатите  от изпитването  
трябва  да бъдат  интерпретирани  във връзка  с наблюденията  от 
проучванията  на субхроничната  токсичност , пренаталната  токс­  
ичност  за развитието , токсикокинетиката  и други  достъпни  
проучвания . Резултатите  от това изпитване  трябва  да бъдат  
използвани  при оценката  на необходимостта  от по-нататъшно  
изследване  на химичното  вещество . Екстраполацията  на 
резултатите  от това изпитване  за хора  е валидна  в ограничена  
степен . Най-голямо  приложение  намират  резултатите , получени  
за недействащите  нива , които  се използват  при определяне  на 
допустимите  нива  на експозиция  за хора  (20) (21) (22) (23).  
3. ДОКЛАДВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ОТЧЕТ  ЗА ИЗПИТВАНЕТО  
Отчетът  за изпитването  трябва  да включва  следната  
информация : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  и, където  е необходимо , физикохимични  
свойства ; 
— данни  за идентифициране  на химичното  вещество ; 
— степен  на чистота  на веществото . 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— обосновка  за избора  на носителя , когато  той е различен  от 
водата . 
Опитни  животни : 
— използван  вид/порода ; 
— брой , възраст  и пол на животните ; 
— източник  за доставка  на животните , условия  на отглеждане  във 
вивариума , диета , материали  за приготвяне  на гнездо  и др.; 
— индивидуална  телесна  маса  на животните  в началото  на 
изпитването . 
Условия  на провеждане  на изпитването : 
— обосновка  за избора  на дозите ; 
— описание  на подготовката  на изпитваното  вещество  за 
въвеждане  (приготвяне  на формулация /включване  в 
храната ), използвани  концентрации ; 
— стабилност  и хомогенност  на формулацията ; 
— описание  на въвеждането  на изпитваното  вещество ; 
— изчисляване  на достигнатите  дневни  дози  (mg/kg т.м.) въз 
основа  на концентрациите  на изпитваното  вещество  в 
диетата /питейната  вода  (ррm), когато  това е приложимо ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 522
 
— критерии  за качество , на които  отговарят  храната  и водата  за 
пиене . 
Резултати : 
— данни  за консумацията  на храна ; данни  за консумацията  на 
вода , когато  такива  са налице ; усвояване  на храната  (прираст  
на телесната  маса  на грам  консумирана  храна ); прием  на 
изпитваното  вещество  от Р и F1 животни  с изключение  на 
времето , през което  женските  и мъжките  животни  са съжит­  
елствали  заедно , както  и на периода  на лактация  (като 
минимум  последната  третина  от този период ); 
— данни  за резорбцията  на веществото  (когато  такива  са 
налице ); 
— данни  за телесната  маса  на Р и F1 животните , избрани  за 
чифтосване ; 
— данни  за телесната  маса  на малките  (индивидуално  и за 
всяко  котило ); 
— телесна  маса  в деня  на убиването  и абсолютна  и относителна  
органна  маса  за родителските  животни ; 
— природа , степен  на изразеност , продължителност  и 
обратимост  на клиничните  симптоми ; 
— време  на настъпване  на смъртта  по време  на проучването , 
като се отбелязва  кои животни  са преживели  до деня  на 
убиването ; 
— данни  за токсичния  отговор  в групите  по пол и ниво  на 
експозиция , включително  индекси  на чифтосване , 
фертилитет , гестация , раждане , преживяемост  и лактация ; в 
отчета  трябва  да се посочат  конкретните  стойности , въз 
основа  на които  са изчислени  тези индекси ; 
— токсични  или други  ефекти  върху  възпроизводството , 
потомството , постнаталния  растеж  и т.н.; 
— наблюдения  при макроскопския  оглед ; 
— подробно  описание  на всички  хистопатологични  промени ; 
— брой  на женските  животни  от поколение  Р и F1 с нормален  
естрален  цикъл ; продължителност  на цикъла ; 
— общ брой  на сперматозоидите  в опашката  на епидидима , 
процент  на прогресивно  подвижните  сперматозоиди , 
процент  на сперматозоидите  с нормална  морфология ; 
процент  на сперматозоидите  с всеки  вид аномалия , който  е 
установен ; 
— време  до чифтосването  (брой  на дните  до извършване  на 
чифтосването ); 
— продължителност  на бременността ; 
— брой  на имплантациите  и жълтите  тела; брой  на животните  
във всяко  котило ; 
— брой  на живородените  и постимплантационните  загуби ; 
— брой  на малките , родени  с видими  външни  аномалии ; когато  
е определен  броят  на животните  с ниска  телесна  маса  при 
раждането , той трябва  да се посочи ; 
— данни  за характерните  физически  особености  на потомството  
и други  данни  за постнаталното  развитие ; трябва  да се 
обоснове  подборът  на разгледаните  характерни  физически  
особености ; 
— данни  за функционалните  наблюдения  при малките  и при 
полово  зрелите  животни , когато  това е приложимо ; 
— статистическа  обработка  на резултатите , когато  това е необ­  
ходимо . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 523
 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения , включително  стойности  на NOAEL, за ефектите  
върху  майките  и потомството . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Sadleir, R.M.F.S. (1979). Cycles and Seasons, In:  Repro­
duction in Mammals:  I. Germ Cells and Fertilization, C.R. 
Auston and R.V. Short (eds.), Cambridge, New York.  
(2) Gray, L.E. et al., (1989). A DoseResponse Analysis of Metho ­
xychlorInduced Alterations of Reproductive Development and 
Function in the Rat.  Fundamental and Applied Toxicology  
12:92—108.  
(3) Robb, G.W. et al., (1978). Daily Sperm Production and 
Epididymal Sperm Reserves of Pubertal and Adult Rats.  
Journal of Reproduction and Fertility  54:103—107.  
(4) Klinefelter, G.R. et al., (1991). The Method of Sperm 
Collection Significantly Influences Sperm Motion Parameters 
Following Ethane Dimethanesulfonate Administration in the Rat. Reproductive Toxicology  5:39 44
 
(5) Seed, J. et al. (1996). Methods for Assessing Sperm Motility, 
Morphology, and Counts in the Rat, Rabbit, and Dog: a 
Consensus Report.  Reproductive Toxicology  10(3):237—244.  
(6) Chapin, R.E. et al., (1992).Methods for Assessing Rat Sperm 
Motility.  Reproductive Toxicology  6:267—273.  
(7) Klinefelter, G.R. et al., (1992). Direct Effects of Ethane Dimet ­
hanesulphonate on Epididymal Function in Adult Rats: an  In 
Vitro  Demonstration.  Journal of Andrology  13:409—421.  
(8) Slott, V.L. et al., (1991). Rat Sperm Motility Analysis: Metho ­
dologic Considerations.  Reproductive Toxicology  5:449—458.  
(9) Slott, V.L. and Perreault, S.D., (1993). ComputerAssisted 
Sperm Analysis of Rodent Epididymal Sperm Motility Using 
the HamiltonThorn Motility Analyzer. In:  Methods in Toxi ­
cology,  Part A., Academic, Orlando, Florida. pp. 319—333.  
(10) Toth, G.P. et al. (1989). The Automated Analysis of Rat Sperm 
Motility Following Subchronic Epichlorhydrin Administration: Methodologic and Statistical Considerations. Journal of 
Andrology 10: 401—415.
 
(11) Working, P.K. and M. Hurtt, (1987). Computerized Videomic ­
rographic Analysis of Rat Sperm Motility. Journal of Andrology 8:330—337.
 
(12) Linder, R.E. et al., (1992). Endpoints of Spermatoxicity in the 
Rat After Short Duration Exposures to Fourteen Reproductive Toxicants. Reproductive Toxicology 6:491—505.
 
(13) Korenbrot, C.C. et al., (1977). Preputial Separation as an 
External Sign of Pubertal Development in the Male Rat. 
Biological Reproduction 17:298—303.  
(14) Russell, L.D. et al., (1990). Histological and Histopathological 
Evaluation of the Testis, Cache River Press, Clearwater, Florida.
 
(15) Heindel, JJ. and R.E. Chapin, (eds.) (1993). Part B. Female 
Reproductive Systems, Methods in Toxicology, Academic, 
Orlando, Florida.  
(16) Heindel, JJ. et al., (1989) Histological Assessment of Ovarian 
Follicle Number in Mice As a Screen of Ovarian Toxicity. In: Growth Factors and the Ovary, A.N. Hirshfield (ed.), Plenum, New York, pp. 421—426.
 
(17) Manson, J.M. and Y.J. Kang, (1989). Test Methods for 
Assessing Female Reproductive and Developmental Toxi ­
cology. In: Principles and Methods of Toxicology, A.W. 
Hayes (ed.), Raven, New York.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 524
 
(18) Smith, B.J. et al,. (1991). Comparison of Random and Serial 
Sections in Assessment of Ovarian Toxicity. Reproductive 
Toxicology 5:379—383.  
(19) Heindel, JJ. (1999). Oocyte Quantitation and Ovarian 
Histology. In: An Evaluation and Interpretation of Repro ­
ductive Endpoints for Human Health Risk Assessment, G. 
Daston,. And C.A. Kimmel, (eds.), ILSI Press, Washington, DC.
 
(20) Thomas, J. A. (1991). Toxic Responses of the Reproductive 
System. In: Casarett and Doull's Toxicology, M.O. Amdur, J. 
Doull, and CD. Klaassen (eds.), Pergamon, New York.  
(21) Zenick, H. and E.D. Clegg, (1989). Assessment of Male 
Reproductive Toxicity: A Risk Assessment Approach. In: Prin ­
ciples and Methods of Toxicology, A.W. Hayes (ed.), Raven 
Press, New York.  
(22) Palmer, A.K. (1981). In: Developmental Toxicology, Kimmel, 
C.A. and J. Buelke-Sam (eds.), Raven Press, New York.  
(23) Palmer, A.K. (1978). In Handbook of Teratology, Vol. 4, J.G. 
Wilson and F.C. Fraser (eds.), Plenum Press, New York.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 525
 
Б.36. ТОКСИКОКИНЕТИКА  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
417 на ОИСР  (ОИСР  TG 417) (2010 г.). Изследванията , изучаващи  
токсикокинетиката  (ТК) на даден  изпитван  химикал , се провеждат  с 
цел да се получи  подходяща  информация  относно  неговите  абсорбция , 
разпределение , биотрансформация  (т.е. метаболизъм ) и екскреция , за 
подпомагане  свързването  на концентрацията  или дозата  с наблюда­  
ваната  токсичност , и за подпомагане  разбирането  на неговия  
механизъм  на токсичност . ТК може  да допринесе  за разбирането  на 
токсикологичните  изследвания , като докаже , че изпитваните  животни  
са системно  експонирани  на изпитвания  химикал , и като разкрие  кои са 
частите , които  са в циркулация  (изходен  химикал /метаболити ). 
Основните  TK параметри , определени  от тези изследвания , предоставят  
също  така информация  по отношение  на потенциала  за натрупване  на 
изпитвания  химикал  в тъкани  и/или органи  и на потенциала  за 
предизвикване  на биотрансформация  в резултат  на експозиция  на 
изпитвания  химикал . 
2. ТК данни  могат  да допринесат  за оценката  на адекватността  и относ­  
имостта  на данните  за токсичност  от животни  за екстраполация  за 
опасността  и/или оценката  на риска  за човека . В допълнение , токсик­  
окинетичните  изследвания  могат  да предоставят  полезна  информация  
за определяне  нивата  на доза за изследванията  за токсичност  (линейна  
срещу  нелинейна  кинетика ), ефектите  от пътя  на прилагане , бионалич­  
ността , както  и за въпроси  във връзка  с плана  на изследването . Някои  
видове  TK данни  могат  да се използват  при разработване  на физио­  
логично  характеризирани  токсикокинетични  (PBTK) модели . 
3. Съществуват  важни  приложения  за данните  за метаболити /TK, като 
предлагане  на възможни  видове  токсичност  и начини  на действие  и 
тяхната  връзка  с нивото  на доза и пътя  на експозиция . В допълнение , 
данните  за метаболизма  могат  да предоставят  полезна  информация  за 
оценка  на токсикологичната  значимост  на експозициите  на екзогенно  
генерирани  метаболити  на изпитвания  химикал . 
4. Адекватни  токсикокинетични  данни  ще бъдат  от полза  да се подп­  
омогне  по-нататъшното  приемане  и прилагане  на количествените  завис­  
имости  структура -активност , подходите  на съпоставяне  или групиране  
при оценката  на безопасността  на химикалите . Данните  от кинетиката  
могат  също  така да бъдат  използвани  при оценка  на относимостта , в 
токсикологично  отношение , на други  изследвания  (например  in vivo /in 
vitro ). 
5. Освен  ако е посочен  друг  път на експозиция  (вж. по-специално  точка  
74—78), настоящият  метод  за изпитване  се отнася  за орален  път на 
прилагане  на изпитвания  химикал . 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
6. В нормативните  уредби  се съдържат  различни  изисквания  и нужди  по 
отношение  на измерването  на крайните  точки  и параметрите , свързани  
с токсикокинетиката  за различните  класове  химикали  (напр . пестициди , 
биоциди , промишлени  химикали ). За разлика  от повечето  методи  за 
изпитване  настоящият  метод  за изпитване  описва  изпитването  на токс­  
икокинетиката , което  включва  множество  измервания  и крайни  точки . 
В бъдеще  могат  да бъдат  разработени  няколко  нови  методи  за 
изпитване  и/или ръководства , за отделно  и по-подробно  описване  на 
всяка  крайна  точка . При настоящия  метод  за изпитване  изискванията  
и/или нуждите  на всяка  конкретна  нормативна  уредба  определят  какви  
изпитвания  или оценки  ще се извършват . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 526
 
7. Съществуват  многобройни  изследвания , които  биха  могли  да се 
провеждат  с цел оценка  на токсикокинетичното  поведение  на даден  
изпитван  химикал  за регулаторни  цели . Въпреки  това, в зависимост  
от определени  регулаторни  нужди  или ситуации , не всички  от тези 
изследвания  могат  да бъдат  необходими  за оценка  на изпитвания  
химикал . При планирането  на токсикокинетични  изследвания  са необ­  
ходими  гъвкавост  и съобразяване  с характеристиките  на изпитвания  
химикал , който  е обект  на проучване . В някои  случаи  може  е необ­  
ходимо  проучване  само  на определен  набор  от въпроси  за преодо­  
ляване  на загрижеността  по отношение  на свързаните  с изпитвания  
химикал  опасност  и риск . В някои  ситуации  ТК данни  могат  да се 
събират  като част от оценката  в други  токсикологични  изследвания . 
За други  ситуации  може  да се окаже  необходимо  провеждането  на 
допълнителни  и/или по-изчерпателни  TK изследвания , в зависимост  
от регулаторните  нужди  и/или ако като част от оценката  на изпитвания  
химикал  се появят  нови  въпроси . 
8. Цялата  налична  информация  за изпитвания  химикал  и относимите  
метаболити  и аналози  следва  да бъде  разгледана  от лабораторията , 
извършваща  изпитвания , преди  провеждане  на изследването , с цел 
повишаване  качеството  на изследването  и свеждане  до минимум  на 
използването  на животни . Това  би могло  да включва  данни  от други  
относими  методи  за изпитване  (изследвания  in vivo , изследвания  in vitro  
и/или оценки  in silico ). Физичните  и химичните  свойства , като 
например  коефициентът  на разпределение  октанол /вода  (изразен  като 
log P  OW ), рКа, разтворимостта  във вода , парното  налягане  и молек­  
улната  маса  на даден  химикал , могат  да бъдат  полезни  при планирането  
на изследването  и при интерпретирането  на резултатите . Те могат  да 
бъдат  определени  с използване  на подходящи  методи , както  са описани  
в относимите  методи  за изпитване . 
ОГРАНИЧЕНИЯ  
9. Настоящият  метод  за изпитване  не е разработен  така, че да взема  
предвид  специални  обстоятелства , като например  бременни  или 
кърмещи  животни  и тяхното  потомство , както  и чрез него  да се 
извършва  оценка  на потенциалните  остатъчни  вещества  в експонирани  
животни , отглеждани  за производство  на храни . Въпреки  това, данните , 
получени  от изследване  по Б.36, могат  да предоставят  съпътстваща  
информация  с цел да се дадат  насоки  за планиране  на специфични  
изследвания  за тези проучвания . Настоящият  метод  за изпитване  не е 
предназначен  за изпитване  на наноматериали . Доклад  за 
предварителния  преглед  на указания  на ОИСР  за приложимостта  им 
към наноматериалите  показва , че TG 417 ( равностоен  на настоящия  
метод  за изпитване  Б.36) не може  да се прилага  по отношение  на 
наноматериали  (1). 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
10. Определенията , използвани  за целите  на настоящия  метод  за изпитване , 
са дадени  в допълнение . 
СЪОБРАЖЕНИЯ , СВЪРЗАНИ  С ХУМАННОТО  ОТНОШЕНИЕ  КЪМ  
ЖИВОТНИТЕ  
11. Насоки  за хуманно  отношение  към животните  са на разположение  в 
Ръководство  № 19 на ОИСР  (GD 19) (2). Препоръчва  се ОИСР  GD 19 
да бъде  консултирано  при всички  изследвания  in vivo  и in vitro , 
описани  в настоящия  метод  за изследване . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДИТЕ  
Пилотни  изследвания  
12. Използването  на пилотни  изследвания  се препоръчва  и насърчава  за 
избор  на опитни  параметри  за токсикокинетичните  изследвания  
(например  метаболизъм , масов  баланс , аналитични  процедури , 
определяне  на доза, издишване  на CO  2 и др.). За характеризирането  
на някои  от тези параметри  може  да не се изисква  използване  на 
белязани  химикали . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 527
 
Избор  на животните  
Вид 
13. Животинският  вид (и порода ), използван  за TK изпитване  трябва , за 
предпочитане , да бъде  същият  като този, използван  в други  токсик­  
ологични  изследвания , проведени  с представляващия  интерес  
изпитван  химикал . Обичайно  следва  да се използват  плъхове , тъй 
като същите  са широко  използвани  за токсикологични  изследвания . 
Използването  на други  или допълнителни  животински  видове  може  
да бъде  основателно , ако токсикологични  изследвания  от особена  
важност  демонстрират  доказателство  за значителна  токсичност  при 
тези видове  или ако е доказано , че тяхната  токсичност /токсикокинетика  
е относима  в по-голяма  степен  към човека . Трябва  да бъди  представена  
обосновка  за избора  на животинския  вид и породата  от него . 
14. Освен  ако не е упоменато  друго , настоящият  метод  за изпитване  се 
отнася  за плъховете  като изследван  вид. Възможно  е да се наложи  
някои  от аспектите  на метода  да бъдат  изменени  за използване  на 
други  животински  видове  за изпитването . 
Възраст  и порода  
15. Следва  да се използват  млади , здрави  полово  зрели  животни  (обик­  
новено  на възраст  от 6 до 12 седмици  към времето  на дозирането ) 
(вж. също  точки  13 и 14). Необходимо  е да се даде  обосновка  за 
използването  на животни , които  не са млади  и полово  зрели . Всички  
животни  трябва  да бъдат  на подобна  възраст  в началото  на 
изследването . Колебанията  в теглото  на отделните  животни  следва  да 
не превишават  ± 20 % от средното  тегло  на изпитваната  група . В 
идеалния  случай  използваната  порода  следва  да е същата  като 
използваната  за създаването  на базата  данни  за изпитвания  химикал . 
Брой  и пол на животните  
16. Минимум  четири  животни  от един  и същ пол следва  да се използват  за 
всяка  изпитвана  доза. Необходимо  е да се даде  обосновка  за пола  на 
използваните  животни . Използването  на двата  пола  (четири  мъжки  и 
четири  женски  животни ) следва  да се разгледа , ако има доказателство  в 
подкрепа  на значителни  разлики  по отношение  на токсичността , 
свързани  с пола . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
17. Животните  по принцип  следва  да се настаняват  отделно  по време  на 
периода  на изпитване . Настаняване  в група  може  да бъде  обосновано  
при конкретни  обстоятелства . Осветлението  трябва  да бъде  изкуствено , 
като последователността  е 12 часа светлина /12 часа тъмнина . 
Температурата  на помещението , в което  се отглеждат  опитните  
животни , следва  да бъде  22 °C (± 3 °C), а относителната  влажност  — 
30—70 %. За храненето  могат  да се използват  обичайните  лабораторни  
хранителни  режими  с неограничен  достъп  до вода  за пиене . 
Изпитван  химикал  
18. Следва  да се използва  белязан  изпитван  химикал , съдържащ  14 C, за 
всякакви  аспекти  от изследването , свързани  с определянето  на масов  
баланс  и идентифицирането  на метаболити ; ако обаче  може  да се 
докаже , че: 
— определянето  на масов  баланс  и идентифицирането  на метаболити  
могат  да бъдат  адекватно  оценени  с използване  на небелязан  
изпитван  химикал , 
— аналитичната  специфичност  и чувствителността  на използвания  
метод  с нерадиоактивен  изпитван  химикал  е равна  или по-голяма  
от тази, която  би могла  да бъде  получена  с използване  на белязания  
изпитван  химикал , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 528
 
тогава  не е нужно  да се използва  белязан  изпитван  химикал . Освен  
това могат  да бъдат  използвани  други  радиоактивни  и стабилни  
изотопи , особено  ако елементът  е отговорен  за или се намира  в токс­  
ичната  част на изпитвания  химикал . Ако е възможно , радиомаркерът  
следва  да бъде  разположен  в основна  и метаболитно  стабилна  част от 
молекулата  (не може  да бъде  заместен  или елиминиран  по метаболитен  
път като CO  2 и не става  част от съдържащите  един  въглероден  атом  
групи  в организма ). Белязването  на множество  места  или специфични  
области  от молекулата  може  да бъде  необходимо , за да се следи  мета­  
болитната  съдба  на изпитвания  химикал . 
19. Белязаните  и небелязаните  изпитвани  химикали  следва  да се 
анализират  чрез използване  на подходящи  методи  за установяване  на 
чистотата  и идентичността . Чистотата  на радиоактивния  изпитван  
химикал  следва  да бъде  най-високата  постижима  за даден  изпитван  
химикал  (в идеалния  случай  тя трябва  да е над 95 %) и следва  да се 
положат  разумни  усилия  за идентифициране  на примеси  със 
съдържание  2 или повече  процента . Чистотата , заедно  с идентичността  
и процентното  съдържание  на всякакви  примеси , които  са идент­  
ифицирани , следва  да се докладват . Отделни  регулаторни  програми  
могат  да изберат  да предоставят  допълнителни  насоки , които  да 
послужат  при определянето  и спецификациите  на състоящите  се от 
смеси  изпитвани  химикали , и при методите  за определяне  на чистотата . 
Избор  на доза  
Пилотно  изследване  
20. Обикновено  едократна  орална  доза е достатъчна  за пилотното  
изследване . Дозата  трябва  да не е токсична , но да е достатъчно  
висока , за да позволи  идентифициране  на метаболити  в екскрети  (и 
плазма , ако е подходящо ), както  и да съответства  на оповестената  
цел на пилотното  изследване , както  е отбелязано  в точки  12 от 
настоящия  метод  за изпитване . 
Основни  изследвания  
21. За основните  изследвания  се предпочитат  най-малко  две дози , тъй като 
информацията , получена  от най-малко  две групи  на определена  доза 
може  да допринесе  за определяне  на дозата  при други  изследвания  за 
токсичност , както  и да помогне  при оценката  на зависимостта  доза- 
отговор  на вече достъпни  изпитвания  за токсичност . 
22. Когато  се прилагат  две дози , и двете  дози  трябва  да са достатъчно  
високи , за да позволят  идентифицирането  на метаболити  в екскретите  
(и в плазмата , ако е подходящо ). Информацията  от наличните  данни  за 
токсичност  следва  да бъде  разгледана  за избора  на доза. Ако няма  
налична  информация  (напр . от изследвания  за остра  орална  токсичност , 
при които  са отбелязани  клинични  признаци  на токсичност , или от 
изследвания  за токсичност  при повтаряща  се доза) могат  да бъдат  
взети  предвид  стойности  за по-високата  доза, които  да са под 
очакваните  стойности  на LD  50 (по орален  и дермален  път) или LC  50 
(по инхалаторен  път) или под по-ниската  стойност  на обхвата  при 
остра  токсичност . По-ниската  доза следва  да бъде  част от по- 
високата  доза. 
23. Ако се изследва  само  едно  ниво  на доза, в идеалния  случай  дозата  
трябва  да е достатъчно  висока , за да позволи  идентифицирането  на 
метаболити  в екскретите  (и в плазмата , ако е подходящо ), без да 
предизвиква  видима  токсичност . Евентуално  невключване  на второ  
ниво  на доза следва  да бъде  обосновано . 
24. Ако трябва  да бъде  установено  въздействието  на дозата  върху  кинет­  
ичните  процеси , две дози  може  да са недостатъчни  и най-малко  една  
доза следва  да бъде  достатъчно  висока  за насищане  на тези процеси . 
Ако площта  под кривата  на плазмената  концентрация  във 
времето  (AUC) е нелинейна  между  две нива  на доза, използвани  в 
основното  изследване , това е ясен  признак , че някъде  между  двете  
нива  на доза има насищане  на един  или повече  от кинетичните  
процеси . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 529
 
25. За изпитвани  химикали  с ниска  токсичност  следва  да се използва  макс­  
имална  доза от 1 000 mg на kg телесно  тегло  (при прилагане  по орален  
или дермален  път) (ако прилагането  е по инхалаторен  път, вижте  глава  
Б.2 от настоящото  приложение  за указания ; обикновено  тази доза не 
трябва  да надвишава  2 mg/l). Порад  специфични  за съответния  химикал  
съображения  може  да се наложи  по-висока  доза в зависимост  от регул­  
аторните  нужди . Изборът  на доза следва  винаги  да се обосновава . 
26. Данните  за токсикокинетичното  разпределение  и разпределението  в 
тъканите  могат  да бъдат  подходящи  за определяне  на потенциала  за 
натрупване  и/или устойчивост . Въпреки  това при някои  обстоятелства  
може  да се наложи  прилагане  на повтаряща  се доза i) с цел по- 
цялостно  съобразяване  с потенциала  за натрупване  и/или устойчивост , 
или с промените  в TK (т.е. например  ензимна  индукция  и инхибиция ), 
или ii) съгласно  изискванията  на приложимата  нормативна  уредба . При 
изследвания , включващи  повтарящо  се дозиране , независимо  че 
прилагане  на повтарящи  се ниски  дози  обичайно  е достатъчно , при 
определени  обстоятелства  прилагане  на повтарящи  се високи  дози  
може  също  така да бъде  необходимо  (вж. също  параграф  57).  
Прилагане  на изпитвания  химикал  
27. Изпитваният  химикал  следва  да бъде  хомогенно  разтворен  или в 
суспензия  в същия  носител , използван  на другите  изследвания  за 
орална  токсичност  чрез хранене  през сонда , проведени  с изпитвания  
химикал , ако е достъпна  такава  информация  за носителя . Следва  да 
бъде  предоставена  обосновка  за избора  на носител . Изборът  на 
носителя  и обема  на дозирането  следва  да бъдат  разгледани  при 
планирането  на изследването . Обичайният  начин  на прилагане  е чрез 
сонда ; независимо  от това прилагането  чрез желатинови  капсули  или 
като смес  с храната  може  да има предимства  в специфични  ситуации  (и 
в двата  случая  трябва  да бъде  дадена  обосновка ). Трябва  да се осигури  
проверка  на действителната  доза, приложена  на всяко  животно . 
28. Максималният  обем  течност  за всяко  отделно  орално  прилагане  чрез 
сонда  зависи  от телесното  тегло  на опитните  животни  доза, типа  на 
носителя  на дозата , и от това дали  даването  на храна  е преустановено  
преди  прилагане  на изследвания  химикал . Трябва  да се предостави  
обосновка  за прилагане  или ограничаване  на храната  преди  дозирането . 
Обикновено  обемът  следва  да се поддържа  с възможно  най-ниска  
стойност  както  за воден  носител , така и за различни  от вода  
носители . Обемите  на дозата  обикновено  не следва  да надвишават  10 
ml на kg телесно  тегло  за гризачи . Стойностите  на обемите  на 
носители , използвани  за по-липофилни  изпитвани  химикали , могат  да 
започнат  с 4 ml на kg телесно  тегло . За повтарящо  се дозиране , когато  
би имало  противопоказание  за дневното  гладуване , следва  да бъдат  
разгледани  по-ниски  стойности  на обемите  на дозата  (например  2—4 
ml на kg телесно  тегло ). Когато  е възможно , може  да се обмисли  
използването  на обем  на дозата  на даден  изпитван  химикал , съотв­  
етстващ  на прилагания  в други  изследвания  за орална  токсичност  
през сонда . 
29. За установяване  на бионаличността  или относителната  орална  
абсорбция  могат  да бъдат  използвани  интравенозно  (ИВ) прилагане  
на изпитвания  химикал  и измерване  на изпитвания  химикал  в кръвта  
и/или в екскрети . За ИВ изследването  се прилага  еднократна  доза 
(обичайно  равностойна  на по-ниската  доза по орален  път, но без да я 
превишава  – вж. избор  на доза) от изпитвания  химикал  с използването  
на подходящ  носител . Този  материал  трябва  да бъде  приложен  в 
подходящ  обем  (например  1 ml на kg телесно  тегло ) в избраното  
място  на прилагане  на поне  четири  животни  от подходящия  пол (и 
двата  пола  могат  да бъдат  използвани , ако има основания  за това, 
вж. точка  16). За ИВ прилагане  на изпитвания  химикал  е необходима  
смес , в която  дозата  да е напълно  разтворена  или суспендирана . 
Носителят  за ИВ прилагането  не следва  да въздейства  върху  
интегритета  на кръвните  клетки  или кръвотока . Ако изпитваният  
химикал  се прилага  чрез инфузия , скоростта  на инфузията  следва  да 
бъде  докладвана  и стандартизирана  между  животните , при условие  че ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 530
 
се използва  инфузионна  помпа . Ако се канюлира  югуларната  вена  (за 
прилагане  на изпитвания  химикал  и/или за вземане  на кръв ) или ако за 
прилагане  се използва  феморалната  артерия , следва  да се използва  
анестезия . Трябва  да бъде  отделено  необходимото  внимание  на типа  
анестезия , тъй като той може  да окаже  въздействие  върху  токсикокин­  
етиката . На животните  трябва  да се даде  възможност  да се възстановят  
адекватно  преди  прилагането  на изпитвания  химикал  заедно  с 
носителя . 
30. Други  пътища  на прилагане , например  дермален  и инхалационен  (вж. 
точки  74—78) могат  да бъдат  приложими  за определени  изпитвани  
химикали , като се отчитат  техните  физични  и химични  свойства  и 
очакваната  хуманна  употреба  или експозиция . 
Измервания  
Масов  баланс  
31. Масовият  баланс  се определя  чрез сумиране  на процентите  на прил­  
ожената  (радиоактивна ) доза, екскретирана  в урината , в изпражненията  
и в издишания  въздух , както  и процентите , присъстващи  в тъканите , в 
остатъчния  труп  и в течността  от измиването  на клетката  (вж. точки  
46). Обичайно  общото  възстановяване  на приложения  изпитван  
химикал  (радиоактивност ) от порядъка  на над 90 % се смята  за задо­  
волително . 
Абсорбция  
32. Първоначалната  оценка  на абсорбцията  може  да бъде  постигната  чрез 
изключване  на процента  на дозата  в стомашно -чревния  (СЧ) тракт  и/или 
изпражненията  при определяне  на масовия  баланс . За изчисляване  на 
процента  на абсорбция  вж. точки  33. За изследване  на екскретите  вж. 
точки  44—49. Ако точната  степен  на абсорбция  след дозиране  по орален  
път не може  да бъде  установена  след изследване  на масовия  баланс  
(например , когато  в изпражненията  е налична  над 20 % от приложената  
доза), могат  да се окажат  необходими  допълнителни  проучвания . Тези  
изследвания  могат  да включват  или 1) прилагане  по орален  път на 
изпитвания  химикал  и измерване  на изпитвания  химикал  в жлъчката , 
или 2) орално  и интравенозно  прилагане  на изпитвания  химикал  и 
измерване  на нетния  изпитван  химикал , наличен  по всеки  от двата  
пътя  на прилагане  едновременно  в урината , издишвания  въздух  и 
трупа . Във всеки  от плановете  на изследването  измерването  на радио­  
активността  се извършва  като метод  с използване  на сурогат  за спец­  
ифичен  за химикала  анализ  на изпитвания  химикал  плюс  метаболитите . 
33. Ако се извършва  изследване  на жлъчна  екскреция , обичайно  се 
използва  орален  път за прилагане . При посоченото  изследване  
жлъчните  канали  на най-малко  четири  животни  от подходящия  пол 
(или от двата  пола , ако има основание ) следва  да бъдат  канюлирани , 
и следва  да бъде  приложена  еднократна  доза от изпитвания  химикал . 
След  прилагането  на изпитвания  химикал , екскрецията  на радиоактив­  
ност /изпитван  химикал  в жлъчката  следва  да бъде  наблюдавана  толкова  
дълго , колкото  е необходимо  за оценка  на процентния  дял от прил­  
ожената  доза, който  се отделя  по този път, като тя може  да се използва  
за пряко  изчисляване  на степента  на оралната  абсорбция , както  следва : 
Процент  абсорбция ¼ ðколичество  едновременно  в жлъчка ; урина ; издишан  
въздух  и труп  без да се отчита  съдържанието  в 
стомашно Ä чревния  трактÞ=приложеноколичество  Ü 100 
34. При някои  класове  от изпитвания  химикал  може  да се получи  пряко  
секретиране  на абсорбираната  доза през чревните  мембрани . В такива  
случаи  измерването  на процента  доза в изпражненията  след орална  доза 
при плъхове  с канюлиран  жлъчен  канал  не се счита  за представително  
по отношение  на неабсорбираната  доза. Когато  се предполага , че 
протича  чревна  секреция , се препоръчва  процентът  на абсорбираната  
доза да се основава  на абсорбция , изчислена  от сравнението  на 
екскрецията  след прилагането  по орален  път спрямо  същата  по 
интравенозен  път (плъх , чийто  жлъчен  канал  не е канюлиран  или плъх  
с канюлиран  жлъчен  канал ) (вж. точки  35). Когато  количественото  
определяне  на чревната  секреция  се счита  за необходимо , препоръчва  
се също  така измерване  на екскрецията  при плъх  с канюлиран  жлъчен  
канал  след доза, приложена  по интравенозен  път. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 531
 
Бионаличност  
35. Бионаличността  може  да се определи  от кинетиката  кръв /плазма  на 
групите  с прилагане  по орален  и ИВ път, както  е описано  в точки  
50—52, чрез специфичен  химичен  анализ  на изпитвания  химикал  
и/или съответния (те) метаболит (и) и следователно  не изисква  белязан  
изпитван  химикал . Изчисляването  на бионаличността  (F) на изпитвания  
химикал  или съответния (те) метаболит (и) след  това може  да се 
извърши  както  следва : 
F ¼ ðAUC  exp=AUC  ИВ Þ Ü ðДоза  ИВ=Доза  exp Þ 
където  AUC е площта  под кривата  на плазмената  концентрация  във 
времето , а exp е прилаганият  при опита  път (орален , дермален  или 
инхалаторен ). 
36. За употреба  при оценката  на риска  на системни  ефекти , като цяло  бион­  
аличността  на токсичния  компонент  се предпочита  пред  процентната  
абсорбция  при сравняване  на системни  концентрации  от изследвания  
върху  животни  с аналогични  данни  от биомониторинга  от изследвания  
на експозицията  на работници . Ситуацията  може  да се усложни , ако 
дозите  са в нелинейния  обхват  и поради  това е важно  токсикокинет­  
ичният  скрининг  да определя  дози  в линейния  обхват . 
Разпределение  в тъканите  
37. Познаването  на разпределението  в тъканите  на даден  изпитван  химикал  
и/или метаболитите  му е важно  за определянето  на прицелните  тъкани  
и за разбирането  на дълбочинните  механизми  на токсичността , както  и 
с цел да се получи  информация  за потенциала  за натрупване  и усто­  
йчивост  на изпитвания  химикал  и метаболитите . Процентът  на общата  
(радиоактивна ) доза в тъкани , както  и в останалата  част от трупа , 
следва  да бъде  измерена  най-малко  при прекратяване  на опита , 
свързан  с екскрецията  (напр . обикновено  до 7 дни след  дозата , или 
по-малко , в зависимост  от специфичното  поведение  на изпитвания  
химикал ). Когато  при приключване  на изследването  в тъканите  не е 
открит  изпитван  химикал  (например , защото  изпитваният  химикал  
може  да е бил елиминиран  преди  приключването  на изследването  
поради  кратък  полуживот ), трябва  да се вземат  мерки  да се 
предотврати  погрешно  интерпретиране  на данните . При тези обстоят­  
елства  разпределението  в тъканите  следва  да се изследва  по време  на 
най-високата  концентрация  на изпитвания  химикал  (и/или метаболит ) в 
кръвта /плазмата  (T  max ) или най-високата  стойност  на скоростта  на 
екскреция  чрез урината , според  случая  (вж. точки  38). Освен  това 
вземането  на тъкани  в допълнителни  времеви  точки  може  да е необ­  
ходимо  за определяне  на разпределението  на изпитвания  химикал  и/или 
неговите  метаболити  в тъканите , за оценка  на зависимостта  от времето  
(ако е уместно ), за подпомагане  при установяването  на масовия  баланс  
и/или ако това се изисква  от компетентен  орган . Тъканите , които  
трябва  да се вземат , включват  черен  дроб , мастна  тъкан , стомашно - 
чревен  тракт , бъбрек , далак , цялостна  кръв , остатъчен  труп , тъкани  
от прицелни  органи  и всякакви  други  тъкани , например  щитовидна  
жлеза , еритроцити , репродуктивни  органи , кожа , очи (особено  при 
пигментирани  животни ), от потенциална  значимост  за токсиколог­  
ичната  оценка  на изпитвания  химикал . Следва  да бъде  разгледан  
анализ  на допълнителни  тъкани  в същите  времеви  точки , с оглед  макс­  
имално  използване  на животните  и в случай , че се наблюдава  токс­  
ичност  за прицелни  органи  в изследвания  за субхронична  или за 
хронична  токсичност . Концентрацията  на (радиоактивни ) остатъчни  
вещества  и съотношенията  „тъкан  към плазма “ („тъкан  към кръв “) 
следва  също  да бъдат  докладвани . 
38. Също  така, оценка  на разпределението  в тъканите  в допълнителни  
времеви  точки , като например  времето  на най-високата  концентрация  
в кръвта /плазмата  (например  T max ) или най-високата  стойност  на 
скоростта  на екскреция  чрез урината , получени  от съответните  опити , 
свързани  с кинетиката  на плазмата /кръвта  или с екскрецията , може  да е 
необходима , или да се изисква  от компетентен  орган . Тази  информация  
може  да бъде  от полза  за разбирането  на токсичността  и потенциала  за 
натрупване  и устойчивост  на изпитвания  химикал  и метаболитите . 
следва  да бъде  предоставена  обосновка  за избора  на пробата ; пробите  
за анализ  по принцип  следва  да бъдат  същите  като посочените  по-горе 
(вж. точки  37). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 532
 
39. Количествено  определяне  на радиоактивност  за изследване  на 
разпределението  в тъканите  може  да се извършва  като се използват  
дисекция  на органи , хомогенизиране , изгаряне  и/или разтваряне , 
последвани  от течно -сцинтилационно  броене  на уловените  остатъчни  
вещества . Някои  техники , които  понастоящем  са на различни  етапи  на 
развитие , напр . количествена  авторадиография  на цялото  тяло  и 
микроскопска  авторадиография  на рецептори , могат  да се окажат  
полезни  за определяне  на разпределението  на даден  изпитван  
химикал  в органи  и/или тъкани  (3) (4).  
40. За пътища  на експозиция , различни  от орален , следва  да бъдат  
събирани  и анализирани  специфични  тъкани , като например  бели  
дробове  при изследвания  по инхалаторен  път и кожа  при изследвания  
по дермален  път. Вж. точки  74—78.  
Метаболизъм  
41. Екскрети  (и плазма , ако е целесъобразно ) следва  да се събират  за 
идентификация  и количествено  определяне  на непроменен  изпитван  
химикал  и на метаболити , както  е описано  в точки  44—49. Допуска  
се обединяване  на екскрети  за улесняване  идентифицирането  на мета­  
болити  в рамките  на група  с определена  доза. Препоръчва  се мета­  
болитно  профилиране  от всеки  период  от време . Ако обаче  поради  
липса  на проба  и/или радиоактивност  се изключва  такава  възможност , 
обединяването  на урина  и изпражнения  от няколко  времеви  точки  е 
приемливо , но обединяването  между  различни  полове  или дози  не е 
приемливо . Следва  да се използват  подходящи  качествени  и колич­  
ествени  методи  за анализ  на урина , изпражнения , радиоактивност  на 
издишания  въздух  от третирани  животни , и жлъчка , според  случая . 
42. Следва  да бъдат  положени  разумни  усилия  за идентифициране  на 
всички  метаболити  със съдържание  5 % от приложената  доза или по- 
високо , и за осигуряване  на схема  на метаболизма  за изпитвания  
химикал . Изпитваните  химикали , които  са характеризирани  в 
екскрети  като съдържащи  5 % или повече  от приложената  доза, 
следва  да бъдат  идентифицирани . Идентификацията  се отнася  до 
точното  структурно  определяне  на компонентите . Обикновено  идент­  
ификацията  се извършва  или чрез кохроматография  на метаболита  с 
известни  еталони , като се използват  две отличаващи  се една  от друга  
системи , или чрез техники , чрез които  може  да бъде  извършена  идент­  
ификация  на структурата , като масспектрометрия , ядрено -магнитен  
резонанс  (ЯМР ) и т.н. В случай  на кохроматография  хроматографски  
техники , използващи  същата  стационарна  фаза  с две различни  системи  
разтворители , не се смятат  за адекватна  проверка  на идентичността  на 
метаболита  чрез два метода , тъй като методите  не са независими . 
Идентификацията  чрез кохроматография  следва  да бъде  извършена  
посредством  използването  на две отличаващи  се една  от друга  анал­  
итично  независими  системи , като обратнофазова  и нормалнофазова  
тънкослойна  хроматография  (TLC) и високоефективна  течна  
хроматография  (HPLC). Ако хроматографското  отделяне  е с 
подходящо  качество , тогава  допълнително  потвърждение  със 
спектроскопски  средства  не е необходимо . Като  алтернатива , 
еднозначно  идентифициране  може  също  да бъде  получено  чрез 
използването  на методи , предоставящи  информация  за структурата , 
като например : течна  хроматография /масспектрометрия  (LC-MS), или 
течна  хроматография /тандем  масспектрометрия  (LC-MS/MS), газова  
хроматография /масспектрометрия  (GC-MS), и ЯМР  спектрометрия . 
43. Ако идентифициране  на метаболитите  при 5 % или повече  от прил­  
ожената  доза не е възможно , трябва  да бъде  представена  обосновка /об­ 
яснение  в окончателния  доклад . Може  да е уместно  да се идент­  
ифицират  метоболитите , представляващи  по-малко  от 5 % от прил­  
ожената  доза за по-добро  разбиране  на метаболитния  път за оценка  
на опасността  и/или риска  от изпитвания  химикал . Когато  е 
възможно  следва  да бъде  представено  потвърждение  на структурата . 
Това  може  да включва  профилиране  в плазма  или в кръв , или в 
други  тъкани . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 533
 
Екскреция  
44. Скоростта  и степента  на екскрецията  на приложената  доза следва  да 
бъдат  определени  чрез измерване  на процента  на възстановената  
(радиоактивна ) доза от урина , изпражнения  и издишан  въздух . Тези  
данни  също  допринасят  за изготвяне  на масовия  баланс . Количествата  
на изпитвания  химикал  (радиоактивност ), елиминиран  в урината , 
изпражненията  и издишания  въздух , следва  да се определят  през 
подходящи  интервали  от време  (вж. точки  47—49). Опитите  с 
повтаряща  се доза следва  да бъдат  правилно  планирани  така, че да 
позволяват  събирането  на данни  за екскрецията  за постигане  на 
целите , описани  в точки  26. Това  ще позволи  сравнение  с опитите  с 
еднократна  доза. 
45. Ако пилотно  изследване  е показало , че от изпитвания  химикал  (радио­  
активност ) (съгласно  точки  49) не е екскретирано  значително  
количество  в издишания  въздух , тогава  не е необходимо  да се събира  
издишван  въздух  в окончателното  изследване . 
46. Всяко  животно  трябва  да се постави  в отделно  съоръжение  за 
изследване  на метаболизма , за събиране  на екскрети  (урина , 
изпражнения  и издишан  въздух ). В края  на всеки  период  на събиране  
(вж. точки  47—49) съоръженията  за изследване  на метаболизма  трябва  
да се изплакват  с подходящ  разтворител  (това е известно  като 
„измиване  на клетката “), за да се гарантира  максимално  възстановяване  
на изпитвания  химикал  (радиоактивност ). Събирането  на екскрети  
следва  да бъде  прекратено  след  7 дни, или след  като най-малко  90 % 
от приложената  доза е била  възстановена , в зависимост  от това кое от 
двете  е настъпило  по-рано . 
47. Общите  количества  изпитван  химикал  (радиоактивност ) в урината  
трябва  да се определят  поне  за две времеви  точки  в ден 1 от 
събирането , едната  от които  трябва  да бъде  24 часа след  дозирането , 
и след  това ежедневно  до прекратяване  на проучването . Избирането  на 
повече  от две времеви  точки  за пробовземане  през първия  ден 
(например  в 6, 12 и 24 h) се насърчава . Резултатите  от пилотните  
изследвания  следва  да бъдат  анализирани  за информация  относно  
алтернативни  или допълнителни  времеви  точки  за събиране . Следва  
да се представи  обосновка  за графиците  за събирането . 
48. Общите  количества  изпитван  химикал  (радиоактивност ) в 
изпражненията  следва  да се определят  ежедневно  с начало  24 часа 
след  дозирането  до прекратяване  на изследването , освен  ако пилотни  
изследвания  не предлагат  алтернативни  или допълнителни  времеви  
точки  за събиране . Следва  да се представи  обосновка  за алтернативни  
графици  за събирането . 
49. Събирането  на издишания  CO  2 и други  летливи  материали  по даден  
опит  от изследването  може  да се прекрати , когато  по-малко  от 1 % от 
приложената  доза се намира  в издишвания  въздух  по време  на 24-часов  
период  на събиране . 
Изследвания  на измененията  във времето  
Кинетика  на кръвта /плазмата  
50. Целта  на тези изследвания  е да се получат  оценки  на стойностите  на 
основни  TK параметри  [напр . C  max , T  max , полуживот  (t 1/2 ), AUC] за 
изпитвания  химикал . Тези  изследвания  могат  да се провеждат  с една  
доза или, което  е по-вероятно , с две или повече  дози . Определянето  на 
дозата  следва  да се обуславя  от естеството  на опита  и/или от разг­  
леждания  въпрос . Данни  за кинетиката  могат  да са необходими  за 
изясняване  на въпроси  като бионаличността  на изпитвания  химикал , 
и/или за изясняване  въздействието  на дозата  върху  клирънса  (напр . 
да се изясни  дали  клирънсът  е наситен  по зависещ  от дозата  начин ). 
51. За тези изследвания  следва  да се използват  най-малко  по четири  
животни  от един  пол за група  с определена  доза. Необходимо  е да се 
даде  обосновка  за пола  на използваните  животни . Използване  на двата  
пола  (четири  мъжки  и четири  женски  животни ) следва  да бъде  разг­  
ледано , ако има доказателство  в подкрепа  на значителни  разлики  по 
отношение  на токсичността , свързани  с пола . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 534
 
52. След  прилагане  на изпитвания  химикал  (белязан ), следва  да се вземат  
кръвни  проби  от всяко  животно  в подходящи  времеви  точки , при 
използване  на подходяща  методология  за пробовземане . Обемът  и 
броят  на кръвните  проби , които  могат  да бъдат  получени  от едно  
животно , може  да бъде  ограничен  от потенциалните  въздействия  на 
повтарящото  се пробовземане  върху  здравето  на животните /физио­  
логията  и/или чувствителността  на метода  за анализ . Пробите  следва  
да се анализират  за всяко  отделно  животно . При определени  обстоят­  
елства  (напр . характеризиране  на метаболит ) може  да е необходимо  да 
се обединят  проби  от повече  от едно  животно . Сборните  проби  следва  
да бъдат  ясно  идентифицирани  и следва  да бъде  дадено  обяснение  за 
обединяването . Ако е използван  белязан  изпитван  химикал , възможно  е 
да е целесъобразен  анализ  на общата  налична  радиоактивност . Ако това 
е така, общата  радиоактивност  следва  да бъде  анализирана  в цялостна  
кръв  и плазма , или в плазма  и червени  кръвни  клетки , за да се позволи  
изчисляване  на съотношението  кръв /плазма . При други  обстоятелства  
могат  да се окажат  необходими  по-специфични  проучвания , изискващи  
идентифицирането  на изходното  съединение  и/или метаболитите , или 
за оценка  на свързването  с белтъци . 
Кинетика  в други  тъкани  
53. Целта  на тези изследвания  е да се получи  информация  за изменения  
във времето , за да се даде  отговор  на въпроси , свързани  с теми  като 
начина  на токсично  действие , биоакумулацията  и биоустойчивостта , 
чрез определяне  на нивата  на изпитвания  химикал  в различни  тъкани . 
Изборът  на тъканите  и на броя  на оценените  времеви  точки  зависи  от 
въпроса , който  трябва  да бъде  разгледан , и от базата  токсикологични  
данни  за изпитвания  химикал . При планирането  на тези изследвания  на 
кинетиката  в допълнителни  тъкани  следва  да се вземе  предвид  
събраната  информация , описана  в точки  37—40. Тези  изследвания  
биха  могли  да включват  еднократно  или повтарящо  се дозиране . 
Използваният  подход  следва  да бъде  подробно  обоснован . 
54. Причините  за извършване  на изследвания  за кинетиката  в други  тъкани  
биха  могли  да включват : 
— доказателства  за удължен  полуживот  в кръвта , предполагащи  
евентуално  натрупване  на изпитвания  химикал  в различни  тъкани , 
или 
— интерес  да се установи  дали  е достигнато  равнище  на постигане  на 
стационарно  състояние  в специфични  тъкани  (напр . при 
изследвания  с повтаряща  се доза, въпреки  че може  видимо  да е 
достигнато  равнище  на постигане  на стационарно  състояние  на 
изпитвания  химикал  в кръвта , може  да има интерес  да се 
потвърди , че равнище  на постигане  на стационарно  състояние  е 
постигнато  също  и в прицелни  тъкани ). 
55. За тези типове  изследвания  на измененията  във времето  следва  да се 
прилага  подходяща  орална  доза от изпитвания  химикал  върху  най- 
малко  четири  животни  за дадена  доза за времева  точка , и да се 
следят  измененията  във времето  на разпределението  в избрани  
тъкани . Може  да се използва  само  един  пол, освен  ако се наблюдава  
токсичност , специфична  за отделните  полове . Дали  се анализира  
общата  радиоактивност  или изходният  химикал  и/или метаболитите  
също  така зависи  от разглеждания  въпрос . Оценката  на 
разпределението  в тъканите  трябва  да се направи  с помощта  на 
подходящи  техники . 
Ензимна  индукция /инхибиция  
56. Изследвания  по отношение  на възможните  последици  от ензимна  
индукция /инхибиция  или биотрансформация  на изпитвания  химикал , 
предмет  на изследването , могат  да са необходими  в един  или повече  
от следните  случаи : 
1) достъпни  са доказателства , посочващи  връзка  между  биотранс­  
формация  на изпитвания  химикал  и повишена  токсичност ; 
2) достъпните  данни  за токсичността  показват  нелинейна  зависимост  
между  доза и метаболизъм ; ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 535
 
3) като резултат  от изследванията  за идентифициране  на метаболити  е 
идентифициран  потенциално  токсичен  метаболит , който  може  да е 
произведен  по ензимен  път, индуциран  от изпитвания  химикал ; 
4) при обясняване  на ефекти , за които  се приема  че са свързани  с 
явления  на ензимна  индукция ; 
5) ако токсикологично  значими  промени  в метаболитния  профил  на 
изпитвания  химикал  се наблюдават  чрез опити  или in vitro, или in 
vivo, с различни  животински  видове  или при различни  условия , 
може  да е необходимо  охарактеризиране  на включения (те) 
ензим (и) (например , ензими  от фаза  I като изоензими  на 
Цитохром  P450-зависимата  монооксигеназна  система , ензими  от 
фаза  II като изоензими  на сулфотрансфераза  или уридиндифосфат - 
глюкуронозилтрансфераза  или всякакви  други  относими  ензими ). 
Тази  информация  може  да бъде  използвана  за оценка  на уместността  
на екстраполациите  от един  вид към друг . 
57. За оценка  на свързаните  с изпитвания  химикал  промени  в TK следва  да 
се използват  подходящи , надлежно  валидирани  и обосновани  
протоколи  за изследвания . Примерни  планове  за изследвания  се 
състоят  от повтарящо  се дозиране  с небелязан  изпитван  химикал , 
последвано  от еднократна  белязана  доза през ден 14, или повтарящо  
се дозиране  с белязан  изпитван  химикал  и пробовземане  в дни 1, 7 и 14 
за определяне  на метаболитни  профили . Повтарящото  се дозиране  с 
белязан  изпитван  химикал  може  също  да предостави  информация  за 
биоакумулацията  (вж. точки  26).  
ДОПЪЛНИТЕЛНИ  ПОДХОДИ  
58. Допълнителните  подходи  освен  опитите  in vivo , описани  в настоящия  
метод  за изпитване , могат  да предоставят  полезна  информация  за 
абсорбцията , разпределението , метаболизма  или елиминирането  на 
даден  изпитван  химикал  в някои  видове . 
Използване  на информация  от изследвания  in vitro  
59. Няколко  въпроса  относно  метаболизма  на изпитвания  химикал  могат  да 
бъдат  разгледани  в изследвания  in vitro , като се използват  подходящи  
системи  за изпитване . Прясно  изолираните  или култивирани  
хепатоцити  и субклетъчни  фракции  (напр . микрозоми  и цитозол  или 
фракция  S9) от черен  дроб  могат  да се използват  за изследване  на 
възможни  метаболити . Локалният  метаболизъм  в прицелния  орган , 
например  бял дроб , може  да бъде  от интерес  за оценка  на риска . За 
тези цели  могат  да бъдат  от полза  микрозомните  фракции  от прицелни  
тъкани . Изследванията  с микрозоми  могат  да бъдат  от полза  за прео­  
доляване  на потенциални  различия , свързани  с пола  и жизнения  стадий , 
и за характеризиране  на ензимните  параметри  (K m и V max ), което  може  
да спомогне  за оценка  на зависимостта  на метаболизма  от дозата  по 
отношение  на нивата  на експозиция . В допълнение  микрозомите  могат  
да бъдат  полезни , за да се идентифицират  конкретните  микрозомни  
ензими , участващи  в метаболизма  на изпитвания  химикал , които  
могат  да бъдат  относими  към екстраполациите  от един  вид към друг  
(вж. също  така точки  56). Потенциалът  за индукция  на биотранс­  
формация  може  също  да бъде  изследван  чрез използване  на субкл­  
етъчни  фракции  (напр . микрозоми  и цитозол ) от черен  дроб  на 
животни , предварително  третирани  с изпитвания  химикал , който  е 
обект  на интерес , in vitro  чрез изследвания  за хепатоцитна  индукция  
или от специфични  клетъчни  линии , експресиращи  съответни  ензими . 
При определени  обстоятелства  и при подходящи  условия  субкл­  
етъчните  фракции  с произход  от човешки  тъкани  могат  да бъдат  разг­  
ледани  с оглед  използване  при определянето  на потенциалните  
междувидови  различия  в биотрансформацията . Резултатите  от 
проучванията  in vitro  също  могат  да допринесат  за развитието  на 
PBTK модели  (5). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 536
 
60. Изследванията  in vitro  на дермалната  абсорбция  могат  да предоставят  
допълнителна  информация  за характеризиране  на абсорбцията  (6). 
61. Първични  клетъчни  култури  от чернодробни  клетки  и пресни  срезове  
от тъкани  могат  да бъдат  използвани  за разглеждане  на сходни  въпроси  
както  тези с чернодробни  микрозоми . В определени  случаи  може  да е 
възможно  да се отговори  на специфични  въпроси , като се използват  
клетъчни  линии  с определена  експресия  на съответния  ензим  или 
създадени  чрез генно  инженерство  клетъчни  линии . В някои  случаи  
може  да е полезно  да се проучи  инхибицията  и индукцията  на спец­  
ифични  Цитохром  Р450 изоензими  (напр . CYP1A1, 2E1, 1A2 и други ) 
и/или ензими  от фаза  II от изходното  съединение  с използване  на 
изследвания  in vitro . Получената  информация  може  да е полезна  за 
съединения  със сходна  структура . 
Използване  на токсикокинетични  данни  от изследвания  за токс­  
ичност  като  допълнителна  информация  
62. Анализът  на проби  от кръв , тъкани  и/или екскрети , взети  по време  на 
провеждане  на всякакви  други  изследвания  за токсичност , може  да 
предостави  данни  за бионаличност , изменения  във времето  на конце­  
нтрацията  в плазмата  (AUC, C  max ), потенциал  за биоакумулация , 
проценти  на клирънс  и изменения  в метаболизма  и кинетиката , 
свързани  с пола  или жизнения  стадий . 
63. Разглеждането  на плана  на изследването  може  да се използва , за да се 
отговори  на въпроси , свързани  с: насищане  на пътищата  на абсорбция , 
биотрансформация  или екскреция  при по-високи  нива  на доза; функц­  
ионирането  на нови  метаболитни  пътища  при по-високи  дози  и 
ограничаването  на токсични  метаболити  до по-високи  дози . 
64. Други  свързани  с оценка  на опасността  съображения  биха  могли  да 
включват  въпроси  като: 
— свързана  с възрастта  чувствителност , дължаща  се на разликите  в 
състоянието  на кръвно -мозъчната  бариера , бъбреците  и/или 
капацитета  за детоксикация , 
— чувствителност  на субпопулациите , дължаща  се на разликите  в 
капацитета  за биотрансформация  или на други  токсикокинетични  
различия , 
— степен  на експозиция  на химикали  на плода  по трансплацентарен  
път, или на новороденото  при кърмене . 
Използване  на токсикокинетично  моделиране  
65. Токсикокинетичните  модели  могат  да бъдат  полезни  за различни  
аспекти  на оценката  на опасността  и риска , като например  в прог­  
нозиране  на системната  експозиция  и дозата  за вътрешни  тъкани . 
Освен  това могат  да бъдат  разгледани  специфични  въпроси  относно  
начина  на действие  и тези модели  могат  да осигурят  основа  за екстрап­  
олация  от един  вид към друг , за пътищата  на експозиция , за моделите  
за дозиране  и за оценка  на риска  за човека . Данните  от полза  за 
разработването  на PBTK модели  за даден  изпитван  химикал , за 
всякакви  животински  видове , включват : 1) коефициенти  на 
разпределение , 2) биохимични  константи  и физиологични  параметри , 
3) специфични  за даден  път на прилагане  параметри  на абсорбция , и 4) 
кинетични  данни  in vivo  за оценка  чрез модел  [например  параметри  на 
клирънса  за относимите  (> 10 %) пътища  на екскреция , K m и V max за 
метаболизма ]. Опитните  данни , използвани  за разработване  на даден  
модел , следва  да се генерират  с научнообосновани  методи , а 
резултатите  от прилагането  на модела  следва  да бъдат  валидирани . 
Параметрите , специфични  за изпитвания  химикал  и за животинския  
вид, като процента  на абсорбция , разпределението  в кръвта  и в 
тъканите , и скоростните  константи  за метаболизма  често  се определят  
с цел улесняване  разработването  на некомпартментни  или физио­  
логично  характеризирани  модели  (7). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 537
 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
66. Препоръчва  се докладът  от изследването  да включва  съдържание . 
Основна  част  на доклада  
67. Основната  част на доклада  следва  да включва  информация , обхваната  
от настоящия  метод  за изпитване , организирана  в раздели  и точки , 
както  следва : 
Резюме  
68. Този  раздел  от доклада  от изследването  следва  да включва  резюме  на 
плана  на изследването  и описание  на използваните  методи . Той следва  
също  така да очертае  ключовите  констатации  относно  масовия  баланс , 
естеството  и значимостта  на метаболитите , остатъчните  вещества  в 
тъканите , скоростта  на клирънса , потенциала  за биоакумулация , 
разлики  между  половете  и т.н. Резюмето  следва  да бъде  представено  
достатъчно  подробно , за да позволи  оценка  на констатациите . 
Въведение  
69. Този  раздел  от доклада  следва  да включва  целите , обосновката  и плана  
на изследването , както  и подходящи  препратки  и всякакъв  исторически  
контекст . 
Материали  и методи  
70. Този  раздел  от доклада  следва  да включва  подробно  описание  на 
цялата  уместна  информация , включително : 
а) Изпитван  химикал  
Този  подраздел  следва  да включва  идентификация  на изследвания  
химикал : химично  наименование , молекулна  структура , качествено  
и количествено  определяне  на неговия  химичен  състав , химическа  
чистота  и — когато  е възможно  — тип и количества  на всякакви  
примеси . Той следва  да включва  още и информация  за физичните / 
химичните  свойства , включително  агрегатно  състояние , цвят , бруто  
разтворимост  и/или коефициент  на разпределение , стабилност  и, ако 
е подходящо , корозивност . Ако е приложимо , следва  да бъде  предо­  
ставена  информация  относно  изомери . Ако изпитваният  химикал  е 
белязан , в този подраздел  трябва  да бъде  включена  следната  
информация : типа  на радионуклида , положение  на белязаната  част, 
специфичната  активност  и радиохимична  чистота . 
Трябва  да бъдат  посочени  типът  или описанието  на всякакви  
носители , разредители , дисперсни  среди  в суспензии  и емулсии , 
или други  материали , използвани  при прилагането  на изпитвания  
химикал . 
б) Изпитвани  животни  
Този  подраздел  следва  да включва  информация  за изпитваните  
животни , включително  подбор  и обосновка  за вид, порода  и 
възраст  при започване  на изследването , пол, както  и телесно  тегло , 
здравен  статус  и отглеждане . 
в) Методи  
Този  подраздел  следва  да включва  подробности  относно  плана  на 
изследването  и използваната  методология . Той следва  да включва  
описание  на: 
1) обосновка  за всякакво  изменение  на пътя  и условията  на 
експозиция , ако е приложимо ; ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 538
 
2) обосновка  на избора  на нивата  на доза; 
3) описание  на пилотни  изследвания , използвани  при планиране  на 
опитите  в последващите  изследвания , ако е приложимо . Следва  
да бъдат  представени  подкрепящи  данни  от пилотното  
изследване ; 
4) как е приготвен  разтворът  с дозата  и използваният  тип разт­  
ворител  или носител , ако има такива ; 
5) брой  на групите  за третиране  и брой  на животните  в група ; 
6) нива  на дозиране  и обем  (и специфична  активност  на дозата , 
когато  се използва  радиоактивност ); 
7) път(ища) и начини  за прилагане ; 
8) честота  на дозиране ; 
9) период  на гладуване  (ако се прилага ); 
10) обща  радиоактивност  за животно ; 
11) боравене  с животното ; 
12) събиране  и обработване  на проби ; 
13) методи  за анализ , използвани  за разделяне , количествено  
определяне  и идентификация  на метаболитите ; 
14) граница  на откриване  за използваните  методи ; 
15) други  опитни  измервания  и използвани  процедури  (включ­  
ително  валидиране  на методите  за анализ  на метаболитите ). 
г) Статистически  анализ  
Ако е използван  статистически  анализ  за анализиране  на резултатите  
от изследването , тогава  следва  да бъде  представена  достатъчна  
информация  за използваните  метод  за анализ  и компютърна  
програма , по такъв  начин , че независим  проверяващ /статистик  да 
може  да оцени  повторно  и възпроизведе  анализа . 
В случай  на изследвания , включващи  моделиране  на системи , като 
например  PBTK, представянето  на моделите  следва  да включва  
пълно  описание  на модела , за да се даде  възможност  за независимо  
възпроизвеждане  и валидиране  на модела  (вж. точка  65 и 
определенията  в допълнението ). 
Резултати  
71. Всички  данни  следва  да бъдат  обобщени  и представени  в табличен  вид 
с подходяща  статистическа  оценка , и описани  в текста  на настоящия  
раздел . Данните  за измерване  на радиоактивността  трябва  да бъдат  
обобщени  и представени  по подходящ  за изследването  начин , 
обичайно  като микрограм -еквиваленти  или милиграм -еквиваленти  в 
масата  на пробата , макар  че могат  да бъдат  използвани  други  
единици . Този  раздел  следва  да включва  графични  илюстрации  на 
констатациите , възпроизвеждане  на представителни  хроматографски  и 
спектрометрични  данни , идентифициране /количествено  определяне  на 
метаболити  и предложени  метаболитни  пътища , включително  
молекулна  структура  на метаболитите . Като  допълнение  в този раздел  
трябва  да бъде  включена  следната  информация , ако е приложимо : 
1) количество  и процент  на възстановяване  на радиоактивността  от 
урината , изпражненията , издишания  въздух  и измиването  на 
клетката  от урина  и изпражнения . 
— За изследвания  по дермален  път се включват  също  така данни  за 
възстановяването  на изпитвания  химикал  от третираната  кожа , 
промиването  на кожата  и остатъчната  радиоактивност  в кожата  
от апаратурата , съоръжението  за изследване  на метаболизма , 
както  и резултати  от изследването  на измиването  на кожата . За 
по-нататъшна  дискусия  вж. точки  74—77.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 539
 
— За изследвания  по инхалаторен  път се включват  също  така данни  
за възстановяването  на изпитвания  химикал  от белите  дровове  и 
назалните  тъкани  (8). За по-нататъшна  дискусия  вж. точки  78; 
2) разпределението  в тъканите , докладвано  като процент  от прил­  
ожената  доза и като концентрация  (микрограм -еквиваленти  на 
грам  тъкан ), и съотношения  „тъкан  към кръв “ или „тъкан  към 
плазма “; 
3) материален  баланс , разработен  от всяко  изследване , включващ  
анализ  на телесни  тъкани  и екскрети ; 
4) плазмени  концентрации  и токсикокинетични  параметри  (бионал­  
ичност , AUC, C  max , T  max , клирънс , полуживот ) след  прилагането  
по съответния (те) път(ища) на експозиция ; 
5) скоростта  и степента  на абсорбция  на изпитвания  химикал  след  
прилагането  по съответния (те) път(ища) на експозиция ; 
6) количествата  на изпитвания  химикал  и метаболитите  (докладвани  
като процент  от приложената  доза), събрани  в екскрети ; 
7) препратка  към данни  в допълнение , които  съдържат  индивидуални  
за отделните  животни  данни  за всички  крайни  точки  на измерване  
(например  прилагане  на доза, процент  на възстановяване , конце­  
нтрации , ТК параметри  и др.); 
8) фигура  с предложените  метаболитни  пътища  и молекулните  
структури  на метаболитите . 
Дискусия  и заключения  
72. В този раздел  автора (ите) следва  да: 
1) предоставят  предложен  метаболитен  път въз основа  на резултатите  
от метаболизма  и елиминирането  на изпитвания  химикал ; 
2) дискутират  всякакви  потенциални  видови  и полови  различия  по 
отношение  на елиминирането  и/или биотрансформацията  на 
изпитвания  химикал ; 
3) представят  в табличен  вид и дискутират  идентификацията  и знач­  
имостта  на метаболитите , скоростта  на клирънса , потенциала  за 
биоакумулация  и нивото  на остатъчните  количества  изходен  
химикал  и/или метаболит (и) в тъканите , както  и евентуални  
зависими  от дозата  промени  в TK параметри , според  случая ; 
4) включат  в този раздел  всякакви  относими  TK данни , получени  в 
хода  на провеждането  на изследванията  за токсичност ; 
5) предоставят  сбито  заключение , което  може  да бъде  подкрепено  от 
констатациите  от изследването ; 
6) добавят  раздели  (когато  е необходимо  или уместно ). 
73. Допълнителните  раздели  следва  да се използват  за включване  на 
подкрепяща  библиографска  информация , таблици , фигури , допълнения  
и др. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 540
 
АЛТЕРНАТИВНИ  ПЪТИЩА  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Дермален  
Третиране  по дермален  път 
74. Този  раздел  предоставя  конкретна  информация  за проучването  на токс­  
икокинетиката  на изпитвания  химикал  по дермален  път. За дермалната  
абсорбция  следва  да бъде  консултирана  глава  Б.44 от настоящото  прил­  
ожение  [„Кожна  абсорбция : in vivo метод “ (9)]. За други  крайни  точки , 
като например  разпределението  и метаболизма , може  да се използва  
настоящият  метод  за изпитване  Б.36. При третиране  по дермален  път 
следва  да се използват  едно  или повече  нива  на доза за изпитвания  
химикал . Изпитваният  химикал  (напр . материал , съдържащ  изпитвания  
химикал , който  се прилага  върху  кожата  в чист  вид, разреден  или 
приготвен  по рецепта ) трябва  да бъде  същият  (или реалистичен  
сурогат ) като този, на който  могат  да бъдат  експонирани  хора  или 
други  потенциални  прицелни  видове . Нивото (ата) на доза трябва  да 
бъде  избирано (и) в съответствие  с точки  20—26 от настоящия  метод  
за изпитване . Фактори , които  биха  могли  да бъдат  взети  предвид  при 
избора  на доза за прилагане  по дермален  път, включват  очаквана  
експозиция  на хора  и/или дози , при които  е наблюдавана  токсичност  
в други  изследвания  за дермална  токсичност . При необходимост  
дозата (ите) за прилагане  по дермален  път следва  да се разтвори (ят) в 
подходящ  носител  и да се приложи (ат) в обем , който  е подходящ  за 
доставяне  на дозите . Малко  преди  началото  на изпитването  се 
подстригва  козината  по гръбната  част на тялото  на опитните  
животни . Може  да се използва  бръснене , но то следва  да се 
извършва  приблизително  24 часа преди  изпитването . При 
подстригването  или бръсненето  на козината  следва  да се внимава  да 
не се увреди  кожата , защото  това би могло  да промени  нейната  проп­  
ускливост . Приблизително  10 % от повърхността  на тялото  трябва  да 
бъде  почистена  за прилагане  на изпитвания  химикал . При силно  
токсични  химикали  обхванатата  повърхност  може  да бъде  по-малка  
от приблизително  10 %, но колкото  е възможно  по-голяма  площ  
трябва  да бъде  покрита  с тънък  и еднакъв  филм . Третираната  
повърхност  следва  да е еднаква  за всички  групи , изпитвани  по 
дермален  път. Участъците , към които  се прилага  дозата , трябва  да 
бъдат  защитени  с подходящо  покритие , което  е закрепено  на място . 
Животните  трябва  да бъдат  индивидуално  настанени . 
75. Трябва  да се проведе  изследване  на измиването  на кожата , за да се 
оцени  количеството  на приложената  доза от изпитвания  химикал , 
което  може  да бъде  отстранено  от кожата  чрез измиване  на третирания  
участък  от кожата  с мек сапун  и вода . Това  изследване  може  да 
допринесе  и за изготвяне  на масовия  баланс , когато  изпитваният  
химикал  се прилага  по дермален  път. За това изследване  на измиването  
на кожата  следва  да се приложи  еднократна  доза от изпитвания  
химикал  на две животни . Изборът  на нивото  на доза е в съответствие  
с точки  23 от настоящия  метод  за изпитване  (вж. също  точки  76 за 
дискусия  относно  времето  за контакт  с кожата ). Количествата  на 
изпитвания  химикал , възстановени  при измиванията , следва  да бъдат  
определени  с цел оценка  на ефективността  на отстраняването  на 
изпитвания  химикал  чрез процедурата  по измиване . 
76. Изпитваният  химикал  следва  да се приложи  и задържи  върху  кожата  в 
продължение  на най-малко  6 часа, освен  ако това е възпрепятствано  от 
неговата  корозивност . При отстраняването  на покритието  третирана  
площ  трябва  да се измие  чрез процедурата , изложена  в изследването  
на измиването  на кожата  (вж. точки  75). Както  покритието , така и 
течността  от измиването  следва  да бъдат  анализирани  за остатъчни  
количества  от изпитвания  химикал . При прекратяване  на изследванията  
всяко  животно  следва  да бъде  умъртвено  по хуманен  начин  в съотв­  
етствие  с (2), и третираната  кожа  следва  да бъде  отстранена . Подходящ  
срез от третираната  кожа  следва  да бъдат  анализиран  за определяне  на 
остатъчен  изпитван  химикал  (радиоактивност ). 
77. За токсикокинетичната  оценка  на фармацевтични  продукти  може  да са 
необходими  различни  процедури  съгласно  съответната  нормативна  
уредба . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 541
 
Инхалаторен  път 
78. Следва  да се използва  само  една  концентрация  на изпитвания  химикал  
(или повече , ако е необходимо ). Концентрацията (ите) трябва  да бъде  
избирана (и) в съответствие  с точки  20—26 от настоящия  метод  за 
изпитване . Третирането  по инхалаторен  път следва  да се провежда  с 
използване  на апарати  с „конусовидно  приспособление , позволяващо  
експозиция  само  на носа “ или такива , позволяващи  експозиция  „само  
на главата “, за предотвратяване  на абсорбция  чрез алтернативни  
пътища  на експозиция  (8). Ако се използват  други  условия  на 
експозиция  по инхалаторен  път, обосновката  за изменението  трябва  
да бъде  документирана . Трябва  да бъде  определена  продължителността  
на експозицията  по инхалаторен  път; една  типична  експозиция  е 4—6 
часа. 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) OECD (2009). Preliminary Review of OECD Test Guidelines for their 
Applicability to Manufactured Nanomaterials, Series on the Safety of Manufactured Nanomaterials № 15, ENV/JM/MONO(2009)21, OECD, 
Paris.
 
(2) OECD (2000). Guidance Document on Recognition, Assessment and Use 
of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation; Environmental Health and Safety Publications, Series on 
Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MONO(2000), OECD, Paris.
 
(3) Solon E G, Kraus L (2002). Quantitative whole-body autoradiography in 
the pharmaceutical industry; Survey results on study design, methods, and regulatory compliance, J Pharm and Tox Methods 46: 73-81.
 
(4) Stumpf WE (2005). Drug localization and targeting with receptor 
microscopic autoradiography. J. Pharmacological and Toxicological Methods 51: 25-40.
 
(5) Loizou G, Spendiff M, Barton HA, Bessems J, Bois FY, d’Yvoire MB, 
Buist H, Clewell HJ 3rd, Meek B, Gundert-Remy U, Goerlitz G, Schmitt 
W. (2008). Development of good modelling practice for physiologically based pharmacokinetic models for use in risk assessment: The first steps. Regulatory Toxicology and Pharmacology 50: 400 – 411.
 
(6) Глава  Б.45 от настоящото  приложение  („Кожна  абсорбция : in vitro 
метод “). 
(7) IPCS (2010). Characterization and application of Physiologically-BasedP ­
harmacokinetic Models in Risk Assessment. IPCS Harmonization Project 
Document № 9. Geneva, World Health Organization, International 
Programme on Chemical Safety.  
(8) OECD (2009). Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing, 
Series on Testing and Assessment № 39, ENV/JM/MONO(2009)28, 
OECD, Paris.  
(9) Глава  Б.44 от настоящото  приложение  („Кожна  абсорбция : in vivo 
метод “). 
(10) Barton HA,  et al.  (2006). The Acquisition and Application of Absorption, 
Distribution, Metabolism, and Excretion (ADME) Data in Agricultural Chemical Safety Assessments, Critical Reviews in Toxicology 36: 9-35.
 
(11) Gibaldi M and Perrier D, (1982), Pharmacokinetics, 2nd edition, Marcel 
Dekker, Inc., New York.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 542
 
Допълнение  
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Абсорбция : Процес (и) на поглъщане  на химикали  в или през тъканите . 
Абсорбцията  се отнася  до изходното  съединение  и до всички  негови  мета­  
болити . Да не се бърка  с „бионаличност “. 
Натрупване : (биоакумулация ): Увеличение , с течение  на времето , на колич­  
еството  изпитван  химикал  в тъканите  (обикновено  мастни  тъкани , в 
резултат  на повтаряща  се експозиция ); ако скоростта  на въвеждането  на 
даден  изпитван  химикал  в тялото  е по-висока  от скоростта  на 
елиминирането  му, изпитваният  химикал  се натрупва  в организма  и могат  
да бъдат  достигнати  токсични  концентрации  от него . 
АРМЕ : Акроним  за „Абсорбция , разпределение , метаболизъм  и екскреция “. 
AUC : (площ  под кривата  на плазмената  концентрация  във времето ): Площ  
под кривата  на графиката  на концентрацията  на изпитвания  химикал  в 
плазмата  с течение  на времето . Тя представлява  общото  количество  от 
изпитвания  химикал , абсорбирано  от тялото  в рамките  на предварително  
определен  период  от време . В условия  на линейна  зависимост  AUC (от 
времева  точка  нула  до безкрайност ) е пропорционална  на общото  
количество  от изпитвания  химикал , абсорбирано  от тялото , независимо  от 
скоростта  на абсорбция . 
Авторадиография : (авторадиография  на цялото  тяло ): Използва  се за 
качествено  и/или количествено  определяне  на разположението  на радио­  
активен  изпитван  химикал  в тъканите , в тази техника  се употребява  
рентгенов  филм  или, отскоро , цифрови  изображения  върху  фосфорно  
покритие , за визуализиране  на белязани  молекули  или фрагменти  от 
молекули  чрез записване  стойностите  на радиацията , излъчвана  вътре  в 
изследвания  обект . Количествената  авторадиография  на цялото  тяло , в 
сравнение  с дисекцията  на органи , може  да има някои  предимства  при 
оценката  на разпределението  на изпитвания  химикал  и оценката  на 
общото  възстановено  количество  и на разделителната  способност  на радио­  
активни  материали  в тъканите . Например , значително  предимство  е че може  
да се използва  при модели  с пигментирани  животни  за оценка  на възможно  
свързване  на изпитвания  химикал  с меланина , който  може  да се свързва  с 
някои  молекули . Въпреки  това, макар  че може  да осигури  удобен  преглед  
на цялото  тяло  за свързващи  места  с висок  капацитет  и нисък  афинитет , 
тази техника  може  да е с ограничено  приложение  за разпознаване  на спец­  
ифични  прицелни  места , като например  местата  на свързване  към рецептор , 
за откриването  на които  се изисква  относително  висока  разделителна  
способност  и висока  чувствителност . Когато  се използва  авторадиография , 
опитите , предназначени  за определяне  на масовия  баланс  на прилаганото  
съединение , следва  да бъдат  проведени  като отделна  група  или в 
изследване , което  е отделно  от опита  за установяване  на разпределението  
в тъканите , и в което  всички  екскрети  (които  могат  да включват  и 
издишания  въздух ) и цели  трупове  се хомогенизират  и се анализират  чрез 
течно -сцинтилационно  броене . 
Жлъчна  екскреция : Екскреция  чрез жлъчните  канали . 
Биоакумулация : Вж. „Натрупване “. 
Бионаличност : Фракция  от приложена  доза, която  достига  до системното  
кръвообращение  или е в наличност  на мястото  на физиологична  активност . 
Обичайно  бионаличността  на даден  изпитван  химикал  се отнася  за 
изходното  съединение , но би могла  да се отнася  за негов  метаболит . Тя 
засяга  само  един  химичен  вид. Nota Bene:  бионаличност  и абсорбция  не 
са едно  и също . Например  разликата  между  орална  абсорбция  (т.е. 
присъствие  в чревната  стена  и порталното  кръвообращение ) и бионаличност  
(т.е. присъствие  в системното  кръвообращение  и в тъканите ) може  да 
възникне  от химично  разлагане , дължащо  се на метаболизма  в чревната  
стена , или транспорта  на ефлукс  обратно  към чревния  лумен , или предс­  
истемния  метаболизъм  в черния  дроб , наред  с други  фактори  (10). Бионал­  
ичността  на токсичния  компонент  (изходно  съединение  или метаболит ) е ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 543
 
особено  важен  параметър  при оценката  на риска  за човека  (екстраполация  
от висока  към ниска  доза, екстраполация  от един  път на експозиция  към 
друг ) за определяне  на вътрешна  стойност  от външните  NOAEL или BMD 
(приложена  доза). За ефекти  върху  черния  дроб  при прилагане  по орален  
път е достатъчна  оралната  абсорбция . Въпреки  това, за всякакви  ефекти , 
различни  от тези на портала  на въвеждане , като цяло  не абсорбцията , а 
бионаличността  е по-надежден  параметър  за последваща  употреба  при 
оценка  на риска . 
Биоустойчивост : Вж. „Устойчивост “. 
Биотрансформация : (Обикновено  ензимно ) химично  превръщане  на 
представляващ  интерес  изпитван  химикал  в друг  химикал  в тялото . 
Синоним  е на „метаболизъм “. 
C max : Или максимална  (върхова ) концентрация  в кръвта  (плазма /серум ) след  
прилагането , или максимална  (върхова ) екскреция  (в урина  или 
изпражнения ) след  прилагането . 
Скорост  на клирънса : Количествена  мярка  за скоростта , с която  даден  
изпитван  химикал  се елиминира  от кръвта , плазмата  или определена  
тъкан  за единица  време . 
Компартмент : Структурна  или биохимична  част (или звено ) от тяло , тъкан  
или клетка , която  е отделна  от останалото . 
Пътища  за детоксикация : Поредица  от стъпки , водеща  до елиминиране  на 
токсични  химикали  от тялото  или чрез метаболитни  изменения , или чрез 
екскреция . 
Разпределение : Разпръскване  на изпитван  химикал  и неговите  деривати  в 
организма . 
Ензими /изоензими : Белтъци , които  катализират  химични  реакции . 
Изоензимите  са ензими , които  действат  като катализатор  за подобни  
химични  реакции , но се различават  по своята  аминокиселинна  последоват­  
елност . 
Ензимни  параметри : K  m : константа  на Михаелис  и V max : максимална  
скорост . 
Екскреция : Процес (и), чрез който (ито) приложен  изпитван  химикал  и/или 
неговите  метаболити  се отстраняват  от тялото . 
Екзогенно : Въведено  отвън  или произведено  извън  организма  или сист­  
емата . 
Екстраполация : Извод  на една  или повече  неизвестни  величини  въз основа  
на това, което  е известно  или наблюдавано . 
Полуживот  (t 1/2 ): Времето , за което  концентрацията  на изпитвания  химикал  
намалява  наполовина  в даден  компартмент . В типичния  случай  това 
понятие  се отнася  за плазмената  концентрация  или за количеството  
изпитван  химикал  в цялото  тяло . 
Индукция /ензимна  индукция : Синтез  на ензим  в отговор  на стимул  от 
околната  среда  или молекула -индуктор . 
Линейност /линейна  кинетика : Даден  процес  е линеен  в кинетиката , 
когато  всички  скорости  на преминаване  между  компартментите  са 
пропорционални  на наличните  количества  или концентрации , т.е. от 
първи  ред. Следователно , обемите  на клирънса  и разпределението  са 
постоянни , както  и стойностите  на полуживота . Достигнатите  концентраци  
са пропорционални  на величината  на дозата  за единица  време  (експозиция ), 
и натрупването  е по-лесно  прогнозируемо . Линейността /нелинейността  
може  да бъде  оценена  чрез сравняване  на относимите  параметри , 
например  AUC, след  различни  дози  или след  еднократна  и повтаряща  се 
експозиция . Липса  на зависимост  от дозата  може  да бъде  признак  за 
насищане  на ензимите , включени  в метаболизма  на съединението , увел­  
ичение  на AUC след  повтаряща  се експозиция  в сравнение  с еднократна  
експозиция  може  да бъде  указание  за инхибиция  на метаболизма , а 
намаляването  на AUC може  да бъде  указание  за индукция  на метаболизма  
[вж. също  (11)].  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 544
 
Масов  баланс : Отчитане  на изпитвания  химикал , въвеждан  в системата  и 
напускащ  системата . 
Материален  баланс : Вж. „Масов  баланс “. 
Механизъм  (начин ) на токсичност /механизъм  (начин ) на действие : 
Механизмът  на действие  се отнася  до специфични  биохимични  взаимоде­  
йствия , посредством  които  изпитваният  химикал  произвежда  своя  ефект . 
Начинът  на действие  се отнася  до по-общи  пътища , водещи  до токсичност  
на даден  изпитван  химикал . 
Метаболизъм : Синоним  е на „биотрансформация “. 
Метаболити : Продукти  на метаболизма  или метаболитните  процеси . 
Орална  абсорбция : Процентът  от дозата  от изпитвания  химикал , 
абсорбиран  от мястото  на прилагане  (т.е. стомашно -чревния  тракт ). Този  
особено  важен  параметър  може  да бъде  използван , за да се разбере  частта  
от приложения  изпитван  химикал , която  достига  до порталната  вена  и, 
впоследствие , до черния  дроб . 
Коефициент  на разпределение : Също  известен  като коефициент  на 
разделяне , представлява  мярка  за различната  разтворимост  на даден  
химикал  в два разтворителя . 
Върхови  равнища  в кръвта  (плазмата /серума ): Максимална  (върхова ) 
концентрация  в кръвта  (плазмата /серума ) след  прилагането  (вж. също  
„C max “). 
Устойчивост  (биоустойчивост ): Дългосрочно  наличие  на даден  химикал  
(в дадена  биологична  система ), дължащо  се на резистентност  по 
отношение  на разлагане /елиминиране . 
Информация  от вътрешногрупова  интерполация  на структурно  
подобни  химикали : Информацията  относно  крайната  точка  за един  или 
повече  химикали  се използва  за прогнозиране  на крайната  точка  за 
целевия  химикал . 
Микроскопска  авторадиография  на рецептори  (или микроа­  
вторадиография  на рецептори ): Тази  техника  може  да се използва  за 
изследване  на взаимодействието  на ксенобиотик  със специфични  участъци  
от тъкани  или клетъчни  популации , като например  изследвания  на 
свързването  към рецептор  или изследвания  на специфичен  начин  на 
действие , които  могат  да изискват  висока  разделителна  способност  и 
висока  чувствителност , което  може  да не е осъществимо  с други  техники , 
като например  авторадиография  на цялото  тяло . 
Път на прилагане  (орален , интравенозен , дермален , инхалаторен  и др.): 
Отнася  се до начините , чрез които  химикалите  се прилагат  към тялото  
(напр . орално  чрез сонда , орално  чрез режим  на хранене , дермално , чрез 
инхалация , интравенозно  и др.). 
Насищане : Състояние , при което  стойностите  на един  или повече  
кинетични  процеси  (напр . абсорбция , метаболизъм  или клирънс ) са макс­  
имални  (да се чете „наситен “). 
Чувствителност : Способността  на даден  метод  или инструмент  при 
измерването  да различи  отговори , които  са представителни  за различни  
равнища  на дадена  променлива , представляваща  интерес . 
Равнища  на постигане  на стационарно  състояние  в кръвта  (плазмата ): 
Неравновесно  състояние  на отворена  система , в която  всички  сили , 
действащи  върху  системата , са в еднаква  степен  неутрализирани  от проти­  
водействащи  сили , по такъв  начин , че концентрацията  на всички  нейни  
компоненти  е стационарна , въпреки  че през системата  преминава  материя . 
Моделиране  на системи : (физиологично  характеризирано  токсикокин­  
етично , фармакокинетично  характеризирано , физиологично  
характеризирано  фармакокинетично , биологично  характеризирано  и др.): 
Абстрактен  модел , който  използва  математически  език за описване  на 
поведението  на дадена  система . 
Прицелна  тъкан : Тъкан , в която  се проявява  основен  неблагоприятен  
ефект  от даден  токсикант . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 545
 
Изпитван  химикал : Всякакво  вещество  или смес , изпитвано (а) с 
използване  на настоящия  метод  за изпитване . 
Разпределение  в тъканите : Обратимо  движение  на изпитван  химикал  от 
едно  място  в тялото  до друго . Разпределението  в тъканите  може  да бъде  
изследвано  чрез методи  като дисекция  на органи , хомогенизиране , изгаряне  
и течно -сцинтилационно  броене , или чрез качествена  и/или количествена  
авторадиография  на цялото  тяло . Първата  група  методи  е полезна  при 
получаване  на дадена  концентрация  и процент  на възстановяване  от 
тъкани  на животни  и остатъчни  трупове  от същите  животни , но може  да 
ѝ липсва  достатъчна  разделителна  способност  за всички  тъкани  и може  да 
има по-малко  от идеалното  цялостно  възстановяване  (< 90 %). Вж. по-горе 
определението  за втората  група  методи . 
T max : Време  за достигане  на C max . 
Токсикокинетика  (Фармакокинетика ): Изследване  на абсорбцията , 
разпределението , метаболизма  и екскрецията  на химикали  във времето . 
Валидиране  на модели : Процес  на оценяване  на адекватността  на даден  
модел  да описва  последователно  достъпните  токсикокинетични  данни . 
Моделите  могат  да се оценяват  чрез статистическо  и визуално  сравнение  
на изчислените  чрез тях прогнозни  стойности  със стойностите  от опити  по 
отношение  на обща  независима  променлива  величина  (напр . време ). 
Обхватът  на оценката  следва  да бъде  обоснован  във връзка  с планираната  
употреба  на модела . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 546
 
Б.37. ЗАБАВЕНА  НЕВРОТОКСИЧНОСТ  КЪМ  ОРГАНИЧНИ  
ФОСФОР -СЪДЪРЖАЩИ  ВЕЩЕСТВА  СЛЕД  ОСТРО  
ИЗЛАГАНЕ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
При оценка  на токсичните  ефекти  на веществата  е необходимо  
да се има предвид  способността  на определени  класове  вещества  
да предизвикват  специфичен  вид невротоксичност , неоткрита  в 
други  проучвания . Установено  е, че определени  органични  
фосфор -съдържащи  вещества  предизвикват  забавен  тип неврот­  
оксичност  и следва  да се считат  за потенциални  кандидати  за 
оценка . 
Могат  да се използват  скриниращи  тестове  in vitro  c цел идент­  
ифициране  на веществата , които  предизвикват  късна  
полиневропатия ; отрицателните  находки  обаче  от изследванията  
in vitro  не изключват  възможността  проучваното  вещество  да 
притежава  невротоксичен  потенциал . 
Вж. Общо  въведение , част Б. 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Органичните  фосфор -съдържащи  вещества  включват  ненат­  
оварени  фосфор -органични  естери , тиоестери  или анхидриди  
на органичните  фосфорни , органичните  фосфони  или орга­  
ничните  фосфорамидни  киселини  или свързаните  с тях 
фосфоротични , фосфонотични  или фосфортиоамидни  киселини , 
или други  вещества , които  могат  да предизвикат  забавена  
невротоксичност , понякога  наблюдавана  в този клас вещества . 
Забавената  невротоксичност  е синдром , свързан  с късно  
проявена  атаксия , дистална  аксонопатия  на гръбначния  мозък  
и периферните  нерви , както  и инхибиране  и остаряване  на 
таргетната  за невропатия  естераза  (NTE — neuropathy target este ­
rase), намираща  се в нервната  тъкан . 
1.3. РЕФЕРЕНТНИ  ВЕЩЕСТВА  
Референтно  вещество  може  да бъде  тествано  с положителна  
контролна  група  с цел потвърждаване , че при лабораторни  
условия  реакцията  на опитните  породи  не се променя  знач­  
ително . 
Пример  за широко  използвано  невротоксично  вещество  е три-о- 
толил  фосфат  (CAS 78-30-8, EINECS 201-103-5, CAS номенкл­  
атура : фосфориста  киселина , три(2-метилфенилов )естер ), 
познато  и под името  три-о-крезилфосфат . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Проучваното  вещество  се прилага  орално , в единична  доза, на 
домашни  кокошки , при необходимост  протектирани  от остри  
холинергични  ефекти . Животните  се наблюдават  в продължение  
на 21 дни за поведенчески  отклонения , атаксия  и парализи . 
Биохимичните  измервания , в частност  инхибиране  на таргетната  
за невропатия  естераза  (NTE), се извършват  върху  случайно  
подбрани  от всяка  група  кокошки , обикновено  24 и 48 часа 
след  дозирането . Двадесет  и един  дни след  излагането  оста­  
налите  кокошки  се убиват , след  което  се извършват  хистопат­  
ологични  изследвания  на определени  нервни  тъкани . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 547
 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.5.1.  Подготовка  
Здрави , млади , пораснали  кокошки , неболедуващи  от вирусни  
заболявания , неполучаващи  лекарства  и без нарушения  в похо­  
дката , се подбират  по случаен  признак  и се разпределят  в 
третираните  или контролните  групи , като в продължение  на 
поне  5 дни преди  началото  на проучването  се аклиматизират  
към лабораторните  условия . 
Използват  се достатъчно  големи  клетки  или ограждения , позво­  
ляващи  свободното  движение  на кокошките  и незатрудняващи  
наблюдението  върху  походката  им. 
Дозирането  с проучваното  вещество  обикновено  се извършва  
орално , като се използва  сонда , желатинови  капсули  или друг  
сравним  метод . Течностите  се дават  неразредени  или разредени  
в съответна  среда , като например  царевично  олио ; при 
възможност  твърдите  вещества  се разтварят , тъй като големи  
дози  твърди  вещества  в желатинови  капсули  не се абсорбират  
достатъчно  ефективно . За нетечните  среди  следва  предварително  
да се знаят  токсичните  свойства  на средата , а ако не се познават  
— да се определят  преди  началото  на теста . 
1.5.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.5.2.1.  Опитни  животни  
Препоръчва  се използването  на млади  пораснали  носещи  
кокошки  (Gallus gallus domesticus ), на възраст  8—12 месеца . 
Участват  стандартни  видове  и породи , кокошките  се отглеждат  
при условия , позволяващи  свободно  движение . 
1.5.2.2.  Брой  и пол 
В допълнение  към третираната  група  следва  да се използват  и 
други  две групи  — контролна  за действието  на средата  и полож­  
ителна  контролна . Контролната  група  за средата  се третира  по 
същия  начин  както  и третираната  група , с изключение  на това, 
че проучваното  вещество  не се прилага . 
Следва  да участват  достатъчно  голям  брой  кокошки  във всяка  
група , така че поне  шест  птици  да бъдат  убити  с цел биох­  
имични  проучвания  (по три във всяка  от двете  времеви  точки ) 
и шест  да преживеят  21-дневния  период  на наблюдение  с цел 
хистопатологично  изследване . 
Положителната  контролна  група  може  да участва  едновременно  
в проучването  или да се използват  най-новите  литературни  
данни  за контролна  група . В нея следва  да участват  поне  шест  
кокошки , третирани  с познато  невротоксично  вещество  със 
забавено  начало , от които  три за биохимични  и три за 
патологични  изследвания . Препоръчва  се периодичното  
обновяване  на данните . Необходимо  е събиране  на нови  данни  
за положителна  контролна  група , в случай  че изследващата  
лаборатория  промени  някой  основен  елемент  на провежданото  
проучване  (напр . порода , хранене , условия  на отглеждане ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 548
 
1.5.2.3.  Нива  на доза  
Провежда  се предварително  проучване , използващо  съответен  
брой  кокошки  и групи  с различни  нива  на доза, с цел 
определяне  на нивото , което  ще бъде  използвано  в основното  
проучване . За да се определи  възможно  най-подходящата  доза за 
основното  проучване , е необходимо  е да има известен  леталитет  
в това предварително  проучване . За да се предотврати  смърт , 
дължаща  се на остри  холинергични  ефекти , може  да се 
използва  атропин  или друго  протективно  вещество , за което  се 
знае, че не си взаимодейства  с реакциите  на забавена  неврот­  
оксичност . Могат  да се използват  различни  тест-методи  за 
определяне  на максималната  нелетална  доза за проучваното  
вещество  (вж. метод  Б.1а). При избора  на доза могат  да се 
окажат  полезни  както  литературните  данни  за кокошките , така 
и всяка  друга  токсикологична  информация . 
Нивото  на доза на проучваното  вещество  в основното  
изследване  следва  да бъде  възможно  най-високото , имайки  
предвид  резултатите  от предварителното  проучване  за избор  
на доза, както  и горната  граница  на дозата  — 2 000 mg/kg 
телесно  тегло . Всеки  един  смъртен  случай , който  може  да 
настъпи , не бива  да пречи  на преживяването  на достатъчен  
брой  животни , необходими  за биохимичните  (шест ) и хист­  
ологичните  (шест ) изследвания  на 21-вия ден. За да се 
предотврати  смърт , дължаща  се на остри  холинергични  
ефекти , може  да се използва  атропин  или друго  протективно  
вещество , за което  се знае, че не си взаимодейства  с 
реакциите  на забавена  невротоксичност . 
1.5.2.4.  Тест  за определяне  на граница  
Ако тест при ниво  на доза от поне  2 000 mg/kg телесно  тегло /­ 
ден, използвайки  процедурите , описани  в това проучване , не 
предизвиква  видими  токсични  ефекти  и ако не се очаква  токс­  
ичност , изхождайки  от данните  за структурно  свързани  
вещества , то тогава  не е необходимо  да се извършва  проучване , 
използващо  по-висока  доза. Прилага  се тестът  за определяне  на 
граници , освен  ако излагането  на хора  показва  необходимост  от 
използване  на по-високо  ниво  на доза. 
1.5.2.5.  Период  на наблюдение  
Периодът  на наблюдение  следва  да продължи  21 дни. 
1.5.3.  Процедура  
След  прилагане  на протективно  вещество , което  да предотврати  
смърт , дължаща  се на остър  холинергичен  еефект , се прилага  и 
проучваното  вещество  в единична  доза. 
1.5.3.1.  Общо  наблюдение  
Наблюденията  започват  веднага  след  излагането . Всички  
кокошки  се наблюдават  внимателно  няколко  пъти  на ден през 
първите  2 дни, след  което  — поне  един  път дневно  за период  от 
21 дни или до момента  на убиване . Записват  се всички  
симптоми  на токсичност , включително  начално  време , вид, 
тежест  и продължителност  на поведенческите  отклонения . 
Атаксията  се измерва  според  обикновена  скала  за степени , 
състояща  се от поне  четири  нива , парализите  следва  да се 
отбелязват . Поне  два пъти  седмично  кокошките , определени  за 
хистопатологично  изследване , се извеждат  извън  клетките  и се 
подлагат  за период  от време  на форсирана  двигателна  активност , 
например  изкачване  на стълба , с цел улесняване  откриването  на 
минимални  токсични  ефекти . Морибундните  животни  и тези, 
изпитващи  тежък  дистрес  или болка , се отстраняват , хуманно  
се убиват  и дисецират . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 549
 
1.5.3.2.  Телесно  тегло  
Всички  животни  се претеглят  точно  преди  прилагане  на 
проучваното  вещество , след  което  — поне  един  път седмично . 
1.5.3.3.  Биохимия  
Шест  случайно  подбрани  кокошки  от всяка  една  третирана  
група  и контролната  на средата  група , както  и три кокошки  от 
положителната  контролна  група  (в случай  че и тя участва  
едновременно ), следва  да бъдат  убити  в рамките  на няколко  
дни след  дозирането , приготвят  се хистологични  препарати  от 
главния  мозък  и поясната  част на гръбначния  мозък , които  се 
изследват  за инхибираща  активност  на таргетната  за невротокс­  
ичност  естераза . В допълнение  би било  полезно  да се запази  и 
изследва  тъкан  от нервус  ишиадикус  за инхибираща  активност  
на таргетната  за невропатия  естераза . Обикновено  след  24 и 48 
часа се убиват  по три птици  от контролната  и всяка  една  от 
третираните  групи , докато  трите  кокошки  от групата  на полож­  
ителните  контроли  следва  да се убият  на 24-ия час. Ако набл­  
юдението  на клиничните  симптоми  на интоксикация  (това често  
се преценява  чрез наблюдение  на времето  на поява  на 
холинергични  белези ) показва , че токсичното  вещество  може  
да бъде  отстранено  много  бавно , тогава  се предпочита  вземане  
на проби  от три птици  във всяко  от двете  времена  между  24 и 
най-късно  72 часа след  дозирането . 
Върху  тези препарати  може  да се изследва  и активността  на 
ацетилхолинестеразата  (AChE), ако се прецени , че е уместно . 
Спонтанна  реактивация  на AChE може  да настъпи  in vivo  и 
така да доведе  до подценяване  на способността  на веществото  
като AChE инхибитор . 
1.5.3.4.  Макроскопска  дисекция  
Извършва  се макроскопска  дисекция  на всички  животни  
(определени  за убиване  и убити  в морибундно  състояние ), 
която  включва  описание  на изгледа  на главния  и гръбначния  
мозък . 
1.5.3.5.  Хистопатологично  изследване  
Нервната  тъкан  на животните , преживели  периода  на набл­  
юдение  и неизползвани  за биохимични  проучвания , се подлага  
на микроскопско  изследване . Тъканите  се фиксират  in situ , като 
се използват  перфузионни  техники . Препаратите  следва  да 
включват  малкия  мозък  (срединен  надлъжен  срез), продъ­  
лговатия  мозък , гръбначния  мозък  и периферни  нерви . 
Материал  от гръбначния  мозък  се взема  на ниво  горен  шиен  
отдел , средногръден  и лумбо -сакрален . Взема  се и материал  от 
дисталния  отдел  на тибиалния  нерв  и неговите  клонове  към 
мускулус  гастрокнемиус  и нервус  ишиадикус . Препаратите  се 
оцветяват  съответно  и специфично  за миелин  и аксон . 
2. ДАННИ  
Отрицателните  резултати  за крайните  цели , избрани  за този 
метод  (биохимия , хистопатология  и наблюдение  на 
поведението ), обикновено  не изискват  по-нататъшно  тестуване  
за забавена  невротоксичност . Еднозначните  или 
неинформативните  резултати  по отношение  на тези крайни  
цели  може  да наложат  по-нататъшно  уточняване . 
Предоставят  се индивидуалните  данни . В допълнение , всички  
данни  са обобщават  в таблична  форма , показваща  за всяка  
опитна  група : броя  на животни  в началото  на теста , броя  на 
животните , показали  увреждания , поведенчески  или биохимични  
отклонения , вид и тежест  на тези увреждания  или ефекти , както  
и процент  на животните , показали  определен  тип и тежест  на 
уврежданията  или ефекта . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 550
 
Находките  от това проучване  се оценяват  от гледна  точка  на 
честота , тежест  и взаимна  връзка  между  поведенческите , биох­  
имичните  и хистопатологичните  ефекти , както  и всеки  друг  
наблюдаван  ефект  в третираните  и контролните  групи . 
Числовите  резултати  следва  да бъдат  оценени  чрез съответни  и 
общоприети  статистически  методи . Статистическите  методи  се 
подбират  по време  на проектиране  на проучването . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  следва  да съдържа  по възможност  следната  
информация : 
Опитни  животни : 
— използвани  породи ; 
— брой  и възраст  на животните ; 
— източник , условия  на отглеждане , хранене  и т.н.; 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на теста . 
Условия  на теста : 
— подробности  относно  приготвяне  на проучваното  вещество , 
стабилност  и хомогенност , където  е възможно ; 
— обосновка  за избор  на средата ; 
— подробности  относно  прилагане  на проучваното  вещество ; 
— подробности  относно  качество  на храната  и водата ; 
— обосновка  на избора  на доза; 
— спецификация  на приложените  дози , включително  
подробности  за средата , обема  и физичната  форма  на прил­  
аганото  вещество ; 
— същност  и подробности  за прилагането  на каквито  и да са 
протективни  вещества . 
Резултати : 
— данни  за телесното  тегло ; 
— данни  за отговора  към токсичност  според  групата , включ­  
ително  и смъртност ; 
— същност , тежест  и продължителност  на клиничните  набл­  
юдения  (обратимост  на наблюдаваното  или не); 
— подробно  описание  на биохимичните  методи  и находки ; 
— находки  при дисекцията ; 
— подробно  описание  на всички  хистопатологични  данни ; 
— статистическа  обработка  на резултатите , където  е уместно . 
Обсъждане  на резултатите . 
Изводи . 
4. ПРЕПРАТКИ  
Този  метод  е еднакъв  с ОECD TG 418.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 551
 
Б.38. ЗАБАВЕНА  НЕВРОТОКСИЧНОСТ  КЪМ  ОРГАНИЧНИ  
ФОСФОР -СЪДЪРЖАЩИ  ВЕЩЕСТВА  НА 28-ИЯ ДЕН  В 
ПРОУЧВАНЕ  ЗА ПОВТАРЯЩА  СЕ ДОЗА  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
При оценка  на токсичните  ефекти  на веществата  е необходимо  
да се има предвид  способността  на определени  класове  вещества  
да предизвикват  специфичен  вид невротоксичност , неоткрита  в 
други  проучвания . Установено  е, че определени  органични  
фосфор -съдържащи  вещества  предизвикват  забавен  тип неврот­  
оксичност  и следва  да се смятат  за потенциални  кандидати  за 
оценка . 
Могат  да използват  скриниращи  тестове  in vitro  c цел идент­  
ифициране  на веществата , които  могат  да предизвикат  късна  
полиневропатия ; отрицателните  находки , обаче , от 
изследванията  in vitro  не изключват  възможността  проучваното  
вещество  да притежава  невротоксичен  потенциал . 
Настоящият  28-дневен  тест за забавена  невротоксичност  дава 
информация  за възможните  здравни  рискове , които  могат  да се 
появят  в резултат  на повтарящи  се излагания  в ограничен  
период  от време . Той дава информация  за отговор  на доза и 
предлага  оценка  на ненаблюдаваните  странични  ефекти , която  
е полезна  за установяване  на критерии  за безопасно  излагане . 
Вж. също  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Органичните  фосфор -съдържащи  вещества  включват  ненат­  
оварени  фосфор -органични  естери , тиоестери  или анхидриди  
на органичните  фосфорни , органичните  фосфони  или орга­  
ничните  фосфорамидни  киселини  или свързаните  с тях 
фосфоротични , фосфонотични  или фосфортиоамидни  киселини , 
или други  вещества , които  могат  да предизвикат  забавена  
невротоксичност , понякога  наблюдавана  в този клас вещества . 
Забавената  невротоксичност  е синдром , свързан  с късно  
проявена  атаксия , дистална  аксонопатия  на гръбначния  мозък  
и периферните  нерви , както  и инхибиране  и остаряване  на 
таргетната  за невропатия  естераза  (NTE — neuropathy target este ­
rase), намираща  се в нервната  тъкан . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Проучваното  вещество  се прилага  ежедневно  орално  на 
домашни  кокошки  в продължение  на 28 дни. Животните  се 
наблюдават  поне  един  път дневно  за поведенчески  отклонения , 
атаксия  и парализи  до 14-ия ден след  последната  доза. Биохим­  
ичните  измервания , в частност  инхибиране  на таргетната  за 
невропатия  естераза  (NTE), се извършват  върху  случайно  
подбрани  от всяка  група  кокошки , обикновено  24 и 48 часа 
след  дозирането . Две седмици  след  последната  доза се убиват  
и останалите  кокошки , след  което  се извършват  хистопат­  
ологични  изследвания  на определени  нервни  тъкани . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 552
 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.4.1.  Подготовка  
Здрави  млади , пораснали  кокошки , неболедуващи  от вирусни  
заболявания , неполучаващи  лекарства  и без нарушения  в 
походката  се подбират  по случаен  признак  и се разпределят  в 
третираните  или контролна  групи , като в продължение  на поне  5 
дни преди  началото  на проучването  се аклиматизират  към 
лабораторните  условия . 
Използват  се достатъчно  големи  клетки  или ограждения , позво­  
ляващи  свободното  движение  на кокошките  и незатрудняващи  
наблюдението  върху  походката  им. 
Дозирането  се извършва  всеки  ден, 7 дни седмично , за предп­  
очитане  чрез сонда  или желатинови  капсули . Течностите  се 
дават  неразредени  или разредени  в съответна  среда , като 
например  царевично  олио ; при възможност  твърдите  вещества  
се разтварят , тъй като големи  дози  твърди  вещества  в 
желатинови  капсули  не се абсорбират  достатъчно  ефективно . 
За нетечните  среди  следва  предварително  да се знаят  токсичните  
свойства  на средата , а ако не се познават  — да се определят  
преди  началото  на теста . 
1.4.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.4.2.1.  Опитни  животни  
Препоръчва  се използването  на млади  пораснали  носещи  
кокошки  (Gallus gallus domesticus ) на възраст  8—12 месеца . 
Участват  стандартни  видове  и породи , кокошките  се отглеждат  
при условия , позволяващи  свободно  движение . 
1.4.2.2.  Брой  и пол 
Обикновено  се използват  поне  три третирани  групи  и една  
контролна  за действието  на средата . Контролната  група  за 
средата  се третира  по същия  начин , както  и третираната  група , 
с изключение  на това, че проучваното  вещество  не се прилага . 
Следва  да участват  достатъчно  голям  брой  кокошки  във всяка  
група , така че поне  шест  птици  да бъдат  убити  с цел биох­  
имични  проучвания  (по три във всяка  от двете  времеви  точки ) 
и шест  да преживеят  14-дневния  период  на наблюдение  с цел 
хистопатологично  изследване . 
1.4.2.3.  Нива  на доза  
Нивата  на доза се избират  в зависимост  от трите  резултата  от 
острия  тест за забавена  невротоксичност , както  и от всички  
други  налични  данни  за токсичност  и кинетика  на проучваното  
вещество . Избира  се най-високата  доза с цел индуциране  на 
токсични  ефекти , за предпочитане  — забавена  невротоксичност , 
без обаче  да се стига  до смъртен  изход  или видимо  страдание . 
След  това се избира  постепенно  намаляващ  ред на дозовите  нива  
с цел установяване  на всеки  един  ефект , свързан  с дозата , както  
и най-ниското  ниво  на доза, при което  не се наблюдават  
странични  ефекти . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 553
 
1.4.2.4.  Тест  за определяне  на граница  
Ако тест при ниво  на доза от поне  1 000 mg/kg телесно  тегло  
дневно , използвайки  процедурите , описани  в това проучване , не 
предизвиква  видими  токсични  ефекти  и ако не се очаква  токс­  
ичност , изхождайки  от данните  за структурно  свързани  
вещества , то тогава  не е необходимо  да се извършва  проучване , 
използващо  по-висока  доза. Прилага  се тестът  за определяне  на 
граници , освен  ако излагането  на хора  показва  необходимост  от 
използване  на по-високо  ниво  на доза. 
1.4.2.5.  Период  на наблюдение  
Всички  животни  се наблюдават  поне  един  път дневно  по време  
на периода  на излагане , както  и 14 дни след  това, освен  ако не 
са определени  за дисекция . 
1.4.3.  Процедура  
Животните  се дозират  с проучваното  вещество  седем  дни 
седмично  за период  от 28 дни. 
1.4.3.1.  Общо  наблюдение  
Наблюденията  започват  веднага  след  излагането . Всички  
кокошки  се наблюдават  внимателно  поне  един  път дневно , 
всеки  ден от 28-дневния  период  на третиране , и в продължение  
на 14 дни след  дозирането  или до момента  на убиване . Записват  
се всички  симптоми  на токсичност , включително  начално  време , 
вид, тежест  и продължителност  на поведенческите  отклонения . 
Атаксията  се измерва  според  обикновена  скала  за степени , 
състояща  се от поне  четири  нива , парализите  следва  да се 
отбелязват . Поне  два пъти  седмично  кокошките , определени  за 
хистопатологично  изследване , се извеждат  извън  клетките  и се 
подлагат  за период  от време  на форсирана  двигателна  активност , 
например  изкачване  на стълба , с цел улесняване  откриването  на 
минимални  токсични  ефекти . Морибундните  животни  и тези, 
изпитващи  тежък  дистрес  или болка , се отстраняват , хуманно  
се убиват  и се дисецират . 
1.4.3.2.  Телесно  тегло  
Всички  животни  се претеглят  точно  преди  прилагане  на 
проучваното  вещество , след  което  — поне  един  път седмично . 
1.4.3.3.  Биохимия  
Шест  кокошки , случайно  подбрани  от всяка  една  третирана  
група  и контролната  на средата  група , следва  да бъдат  убити  в 
рамките  на няколко  дни след  последната  доза; приготвят  се 
хистологични  препарати  от главния  мозък  и поясната  част на 
гръбначния  мозък , които  се изследват  за инхибираща  активност  
на таргетната  за невропатия  естераза  (NТЕ). В допълнение  би 
било  полезно  да се запази  и изследва  тъкан  от нервус  
ишиадикус  за инхибираща  активност  на таргетната  за 
невропатия  естераза  (NТЕ). Обикновено  на 24-ия и 48-ия час 
след  прилагане  на последната  доза се убиват  по три птици  от 
контролната  и всяка  една  от третираните  групи . Ако данните  от 
проучването  за остра  токсичност  или други  проучвания  (напр . 
токсикокинетични ) установяват , че по-подходящи  за убиване  
след  последната  доза, са други  времена , то тогава  се следват  
тези времена  и причините  за промяната  се документират . 
Върху  тези препарати  може  да се изследва  и активността  на 
ацетилхолинестеразата  (АСhЕ), ако се прецени , че е уместно . 
Спонтанна  реактивация  на АСhЕ може  да настъпи  in vivo  И 
така да доведе  до подценяване  на способността  на веществото  
като АСhЕ инхибитор . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 554
 
1.4.3.4.  Макроскопска  дисекция  
Извършва  се макроскопска  дисекция  на всички  животни  
(определени  за убиване  и убити  в морибундно  състояние ), 
която  включва  описание  на изгледа  на главния  и гръбначния  
мозък . 
1.4.3.5.  Хистопатологично  изследване  
Нервната  тъкан  на животните , преживели  периода  на наблюдение  
и неизползвани  за биохимични  проучвания , се подлагат  на 
микроскопско  изследване . Тъканите  се фиксират  in situ , като се 
използват  перфузионни  техники . Препаратите  следва  да включват  
малкия  мозък  (срединен  надлъжен  срез), продълговатия  мозък , 
гръбначния  мозък  и периферни  нерви . Материал  от гръбначния  
мозък  се взема  на ниво  горен  шиен  отдел , средногръден  и лумбо - 
сакрален . Взема  се и материал  от дисталния  отдел  на тибиалния  
нерв  и неговите  клонове  към мускулус  гастрокнемиус  и нервус  
ишиадикус . Препаратите  се оцветяват  съответно  и специфично  за 
миелин  и аксон . Първоначално  се извършва  микроскопско  
изследване  на препаратите  от тъкани  на всички  животни  от 
контролната  и групата , получила  висока  доза. Ако се намерят  
доказателства  за ефекти  в групата  с висока  доза, следва  да се 
извърши  микроскопско  изследване  и при кокошките  от групите , 
получили  средна  и ниска  доза. 
2. ДАННИ  
Отрицателните  резултати  за крайните  цели , избрани  за този 
метод  (биохимия , хистопатология  и наблюдение  на 
поведението ), обикновено  не изискват  по-нататъшно  тестуване  
за забавена  невротоксичност . Еднозначните  или 
неинформативните  резултати  по отношение  на тези крайни  
цели  могат  да наложат  по-нататъшно  уточняване . 
Предоставят  се индивидуалните  данни . В допълнение , всички  
данни  са обобщават  в таблична  форма , показваща  за всяка  
опитна  група : броя  на животните  в началото  на теста , броя  на 
животните , показали  увреждания , поведенчески  или биохимични  
отклонения , вид и тежест  на тези увреждания  или ефекти , както  
и процент  на животните , показали  определен  тип и тежест  на 
уврежданията  или ефекта . 
Находките  от това проучване  се оценяват  от гледна  точка  на 
честота , тежест  и взаимна  връзка  между  поведенческите , биох­  
имичните  и хистопатологичните  ефекти , както  и всеки  друг  
наблюдаван  ефект  в третираните  и контролната  групи . 
Числовите  резултати  следва  да бъдат  оценени  чрез съответни  и 
общоприети  статистически  методи . Статистическите  методи  се 
подбират  по време  на проектирането  на проучването . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  следва  да съдържа , по възможност , следната  
информация : 
Опитни  животни : 
— използвани  породи ; 
— брой  и възраст  на животните ; 
— източник , условия  на отглеждане , хранене , и т.н.; 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на теста . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 555
 
Условия  на теста : 
— подробности  относно  приготвяне  на проучваното  вещество , 
стабилност  и хомогенност , където  е възможно ; 
— обосновка  за избор  на средата ; 
— подробности  относно  прилагане  на проучваното  вещество ; 
— подробности  относно  качество  на храната  и водата ; 
— обосновка  за избора  на доза; 
— спецификация  на приложените  дози , включително  
подробности  за средата , обема  и физичната  форма  на прил­  
аганото  вещество ; 
— обосновка  за избора  на друго  време , различно  от 24-и и 48-и 
час, за извършване  на биохимични  изследвания . 
Резултати : 
— данни  за телесното  тегло ; 
— данни  за отговора  към токсичност  според  групата , включ­  
ително  и смъртност ; 
— липса  на наблюдавани  странични  ефекти ; 
— същност , тежест  и продължителност  на клиничните  набл­  
юдения  (обратимост  на наблюдаваното  или не); 
— подробно  описание  на биохимичните  методи  и находки ; 
— находки  при дисекцията ; 
— подробно  описание  на всички  хистопатологични  данни ; 
— статистическа  обработка  на резултатите , където  е уместно . 
Обсъждане  на резултатите . 
Изводи . 
4. ПРЕПРАТКИ  
Този  метод  е еднакъв  с ОECD ТG 419.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 556
 
Б.39. ИЗПИТВАНЕ  ЗА НЕРЕПАРАТИВЕН  СИНТЕЗ  НА ДНК  
(НСД ) С ЧЕРНОДРОБНИ  КЛЕТКИ  ОТ БОЗАЙНИЦИ  IN 
VIVO  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е изцяло  подобен  на теста  за нерепаративен  
синтез  на ДНК  (НСД ) с чернодробни  клетки  от бозайници  in 
vivo на ОECD ТG 486 от 1997 г. 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на теста  за нерепаративен  синтез  на ДНК  (НСД ) с 
чернодробни  клетки  от бозайници  in vivo  е да се идентифицират  
тествани  вещества , които  индуцират  репарация  на ДНК  в 
чернодробните  клетки  на третираните  животни  (вж. 1, 2, 3, 4).  
Настоящият  in vivo  тест осигурява  метод  за изследване  на генот­  
оксичните  ефекти  на химикали  в черния  дроб . Измерената  
крайна  точка  показва  увреждане  на ДНК  и последваща  
репарация  в чернодробни  клетки . По принцип  черният  дроб  е 
главната  площадка  на метаболизма  на абсорбираните  
съединения . Ето защо  той е подходящото  място  за измерване  
на увреждане  на ДНК  in vivo.  
Ако има доказателства , че тестваното  вещество  няма  да 
достигне  тъкан , която  е обект  на изследването , не е уместно  
да се използва  настоящият  тест. 
Крайната  точка  на нерепаративния  синтез  на ДНК  (НСД ) се 
измерва  чрез определяне  на поглъщането  на радиоактивно  
маркирани  нуклеозиди  в клетки , които  не претърпяват  
репаративен  синтез  на ДНК  (S-фаза ). Най-широко  използваният  
способ  е определянето  на поглъщането  на маркирания  с тритий  
тимидин  3 Н-ТdR) чрез авторадиография . За НСД  тестове  in vivo  
се предпочита  черен  дроб  на плъхове . Освен  черен  дроб  могат  
да се използват  други  тъкани , но те не са обект  на настоящия  
метод . 
Откриването  на НСД  реакция  зависи  от ДНК  базите , изрязани  и 
заместени  от страната  на увреждането . Следователно  тест НСД  е 
особено  ценен  за откриване  на „репарация  с дълги  парчета “ (20 
до 30 бази), индуцирана  от вещество . И обратното , „репарация  с 
къси  парчета “ (една  до три бази) се открива  с много  по-ниска  
чувствителност . Освен  това мутагенните  събития  могат  да се 
случат  поради  липса  на репарация , погрешна  репарация  или 
погрешна  репликация  на ДНК  поражения . Степента  на НСД  
реакция  изобщо  не показва  надеждността  на процеса  на 
репарация . В допълнение  на това възможно  е мутаген  да 
реагира  с ДНК , но увреждането  на ДНК  не се коригира  чрез 
процеса  на ексцизионна  репарация . Липсата  на конкретна  
информация  за мутагенната  активност  от НСД  теста  се 
компенсира  от потенциалната  чувствителност  на тази крайна  
точка , тъй като се измерва  в целия  геном . 
Вижте  също  Общо  въведение , част Б. 
1.2. ДЕФИНИЦИИ  
Клетки  в репарация : нето  ядрено  зрънце  (НЯЗ ), по-голямо  от 
предварително  определена  стойност , която  се доказва  в 
лабораторията , провеждаща  теста . 
Нето  ядрени  зрънца  (НЯЗ ): количествена  мярка  за НСД  
активност  на клетки  в авторадиографни  НСД  тестове , изчис­  
лявана  чрез изваждане  на средния  брой  цитоплазмени  зрънца  
на цитоплазмени  зони , еквивалентни  на ядрото  (ЦЗ), от броя  
на ядрени  зрънца  (ЯЗ): НЯЗ  = ЯЗ – ЦЗ. НЯЗ  количества  се 
изчисляват  за отделните  клетки  и след  това се групират  за 
клетките  в култура , паралелни  култури  и др. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 557
 
Нерепаративен  синтез  на ДНК  (НСД ): ДНК  репаративен  
синтез  след  ексцизията  и отстраняването  на участък  от ДНК , 
съдържащ  област  на увреждане , индуцирано  от химични  
вещества  или физически  агенти . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕТО  
НСД  тестът  in vivo  с чернодробни  клетки  от бозайници  показва  
ДНК  репаративен  синтез  след  ексцизията  и отстраняването  на 
участък  от ДНК , съдържащ  област  на увреждане , индуцирано  от 
химични  вещества  или физически  агенти . Обикновено  тестът  се 
базира  на включването  на 3 Н-ТdR в ДНК  на чернодробни  
клетки , които  имат  ниска  честота  на клетки  в S-фазата  на 
клетъчния  цикъл . Поглъщането  на 3 Н-ТdR обикновено  се 
определя  чрез авторадиография , тъй като този способ  не е 
чувствителен  към интерференция  от страна  на клетки  в S-фаза , 
както  например  течното  сцинтилационно  броене . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.4.1.  Подготовка  
1.4.1.1.  Избор  на животински  вид 
Най-често  се използват  плъхове , въпреки  че всеки  подходящ  вид 
от бозайници  може  да се използва . Следва  да се вземат  общо  
използваните  лабораторни  щамове  на млади , здрави , пораснали  
животни . В началото  на изследването  вариациите  в теглото  на 
животните  следва  да е минимално  и да не превишават  ± 20 % от 
средното  тегло  на всеки  пол. 
1.4.1.2.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Прилагат  се общите  условия  в Общото  въведение  към част Б, 
въпреки  че целта  е влажността  на въздуха  да е от 50 до 60 %.  
1.4.1.3.  Подготовка  на животните  
Здрави , млади , пораснали  животни  се определят  на произволен  
принцип  за контролните  и опитните  групи . Клетките  следва  да 
се подредят  така, че да се намалят  до минимум  евентуалните  
ефекти  от разполагането  им. На животните  се дава уникална  
идентифакация  и се държат  в клетките  поне  пет дни преди  
началото  на изследването , за да се аклиматизират  към 
лабораторните  условия . 
1.4.1.4.  Тествано  вещество /приготвяне  
Твърдите  вещества  за теста  следва  да се разтворят  или 
суспендират  в подходящи  разтворители  или носители  и, ако е 
необходимо , да се разредят  преди  даване  на дозата  на 
животните . Течните  вещества  за теста  могат  да се дават  
директно  или да се разредят  преди  дозиране . Следва  да се 
използват  пресни  препарати  на тестваното  вещество , освен  ако 
данните  за стабилността  му не показват , че може  да се 
съхранява . 
1.4.2.  Условия  за провеждане  на теста  
1.4.2.1.  Разтворител /носител  
Разтворителят /носителят  не следва  да има токсично  въздействие  
с използваните  нива  на дозиране , а също  така не следва  да има 
съмнения  за химическа  реакция  между  него  и тестваното  
вещество . Ако се използват  различни  от добре  познатите  
разтворители /носители , включването  им в теста  следва  да се 
подкрепи  от данни  за съвместимостта  им. Препоръчва  се, 
винаги  когато  е възможно , първо  да се разглежда  възможността  
за прилагането  на воден  разтворител /носител . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 558
 
1.4.2.2.  Контроли  
Паралелни  положителни  и отрицателни  контроли  (разтворител /­ 
носител ) следва  да се включат  във всяка  отделно  провеждана  
част от експеримента . С изключение  на третирането  с 
тестваното  вещество , с животните  в контролните  групи  следва  
да се борави  по същия  начин  както  с животните  от опитните  
групи . 
Положителните  контроли  следва  да са вещества , за които  се 
знае, че генерират  НСД , когато  се администрират  на нива  на 
експозиция , от които  се очаква  да се получи  забележимо  увел­  
ичение  спрямо  общия  фон. Положителните  контроли , които  
имат  нужда  от метаболична  активация , следва  да се използват  
с дози , предизвикващи  умерена  реакция  (4). Дозите  могат  да са 
така избрани , че ефектите  да са ясни , но да не разкриват  
непосредствено  на четеца  идентичността  на кодираните  
предметни  стъкла . Примерите  за положителни  контролни  
вещества  включват : 
Времетраене  на вземането  на проби  Вещество  САS № ЕINECS № 
Ранни  (от 2 до 4 часа) N- нитрозодиметиламин  62-75-9 200-249-8 
Късни  (от 12 до 16 часа) N-2- флуоренилацетамид  (2-AAF) 53-96-3 200-188-6  
Могат  да се използват  други  подходящи  положителни  
контролни  вещества . Приемливо  е положителните  контроли  да 
се администрират  по начин , различен  от тестваното  вещество . 
1.5. ПРОЦЕДУРА  
1.5.1.  Брой  и пол на животните  
Следва  да се използва  адекватен  брой  животни , за да се вземе  
предвид  естественото  биологично  вариране  на реакцията  към 
теста . Броят  на животните  следва  да е минимум  три 
анализируеми  животни  на група . Когато  има натрупана  знач­  
ителна  база данни  от предишни  изследвания , за паралелните  
отрицателни  и положителни  контролни  групи  се изисква  само  
едно  или две животни . 
Ако в момента  на изследването  има налични  данни  от 
изследвания , проведени  със същия  вид и със същия  начин  на 
експозиция , показващи , че няма  съществени  разлики  по 
отношение  токсичността  между  половете , тогава  тестването  на 
един  пол, за предпочитане  мъжки , е достатъчно . Когато  експоз­  
ицията  на хора  към химикали  може  да е специфична  в 
зависимост  от пола , като например  към някои  фармацевтични  
агенти , тестът  следва  да се проведе  с животни  от подходящия  
пол. 
1.5.2.  График  на третиране  
Тестваните  вещества  по принцип  се администрират  като 
еднократно  третиране . 
1.5.3.  Нива  на дозиране  
Нормално  се използват  две нива  на дозиране . Най-високата  доза 
се дефинира  като доза, създаваща  признаци  на такава  токс­  
ичност , че от по-високи  нива  на дозиране , базирани  на същия  
режим , би могло  да се очаква  да доведат  до леталност . По 
принцип  по-ниската  доза следва  да бъде  от 50 % до 25 % от 
високата  доза. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 559
 
Вещества  със специфични  биологични  активности  при ниски , 
нетоксични  дози  (като хормони  и митогени ) могат  да бъдат  
изключения  от критериите  за определяне  на дозата  и следва  да се 
оценяват  за всеки  конкретен  случай . Ако се извършва  изследване  за 
обхват  поради  това, че няма  подходящи  данни  в наличност , то 
следва  да е в същата  лаборатория , като се използват  същият  вид, 
щам, пол и режим  на третиране  както  в главното  изследване . 
Най-високата  доза може  също  да се дефинира  като доза, 
показваща  известни  признаци  на токсичност  в черния  дроб  
(напр . пикнотични  ядра ). 
1.5.4.  Граничен  тест 
Ако тест с едно  ниво  на дозиране  от минимум  2 000 mg/kg 
телесно  тегло  при еднократно  третиране  или две третирания  в 
един  и същи  ден не дава забележими  токсични  ефекти , а не би 
могла  да се очаква  генотоксичност  на базата  на данни  от 
структурно  свързани  вещества , то тогава  пълно  изследване  
може  да не се счита  за необходимо . Очакваната  експозиция  на 
хора  може  да покаже  необходимост  в граничния  тест да се 
използва  по-високо  ниво  на дозиране . 
1.5.5.  Администриране  на дозите  
Тестваното  вещество  обикновено  се дава със стомашна  сонда , 
като се използва  тръба  или подходяща  интубационна  канюла . 
Други  начини  на експозиция  са приемливи , ако могат  да бъдат  
обосновани . Все пак интраперитонеалният  път не се препоръчва , 
тъй като той би изложил  черния  дроб  директно  на въздействието  
на тестваното  вещество , а не през системата  на кръво­  
обращението . Максималният  обем  течност , който  може  да се 
вкара  еднократно  със стомашна  сонда  или инжекция , зависи  от 
големината  на опитното  животно . Обемът  не следва  да 
превишава  2m1/100g телесно  тегло . Обеми , по-високите  от 
тези, следва  да се обосноват . С изключение  на дразнещи  или 
корозивни  вещества , които  нормално  дават  изострящи  ефекти  
при по-високи  концентрации , променливостта  на тестовия  
обем  следва  да се сведе  до минимум  чрез регулиране  на конце­  
нтрацията  с цел осигуряване  на постоянен  обем  на всички  нива  
на дозиране . 
1.5.6.  Подготовка  на чернодробните  клетки  
Чернодробните  клетки  се подготвят  от третирани  животни  
нормално  от 12 до 16 часа след  дозиране . По принцип  е необ­  
ходимо  по-ранно  вземане  на проба  (нормално  от два до четири  
часа след  третиране ), освен  ако няма  ясна  положителна  реакция  
на 12-ия до 16-ия час. Все пак може  да се практикува  вземане  на 
проби  и по друго  време , когато  това е обосновано  на базата  на 
токсикокинетични  данни . 
Краткосрочни  култури  на чернодробни  клетки  от бозайници  
обикновено  се създават  чрез обливане  на черния  дроб  in situ  с 
колагеназа , като прясно  дисоциираните  клетки  се оставят  да се 
прикрепят  към подходяща  повърхност . Чернодробните  клетки  от 
отрицателни  контролни  животни  следва  да имат  жизнес­  
пособност  (5) минимум  50 %.  
1.5.7.  Определяне  на НСД  
Прясно  изолираните  чернодробни  клетки  от бозайници  се 
инкубират  обикновено  със среда , съдържаща  3 Н-ТdR, за 
подходящ  период  от време , напр . от три до осем  часа. В края  
на инкубационното  време  средата  следва  да се отстрани  от 
клетките , които  след  това се инкубират  със среда , съдържаща  
голямо  количество  немаркиран  тимидин , за да се намали  
неабсорбираната  радиоактивност  („студено  отстраняване “). 
След  това клетките  се изплакват , фиксират  и изсушават . При 
по-продължително  инкубационно  време  студеното  отстраняване  
може  и да не е необходимо . Предметните  стъкла  се потопяват  в 
авторадиографична  емулсия , експонират  се на тъмно  (напр . 
държат  се в хладилник  от 7 до 14 дни, проявяват  се, 
оцветяват  се и експонираните  сребърни  зрънца  се преброяват . 
От всяко  животно  се подготвят  две до три предметни  стъкла . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 560
 
1.5.8.  Анализ  
Препаратът  на предметното  стъкло  следва  да съдържа  дост­  
атъчно  клетки  с нормална  морфология , за да може  да се 
направи  пълноценна  оценка  на НСД . Препаратите  се изследват  
под микроскоп  за признаци  на явно  изразена  цитотоксичност  
(напр . пикноза , намалени  нива  на радиоактивно  маркиране ). 
Предметните  стъкла  се кодират  преди  преброяването  на 
зрънцата . Нормално  100 клетки  се изследват  от всяко  животно  
от най-малко  две предметни  стъкла ; база за отчитане  на 
резултатите  от по-малко  от 100 клетки  на животно  следва  да 
бъде  обоснована . 
Не се отчитат  количествата  зрънца  за ядра  в S-фаза , но 
пропорцията  клетки  в S- фаза  може  да се регистрира . 
Количеството  на 3 Н-ТdR, въведено  в ядрата  и цитоплазмата  на 
морфологично  нормални  клетки , по начина , по който  се 
проявява  чрез отлагането  на сребърни  зрънца , следва  да се 
определи  чрез подходящи  методи . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИ  
Следва  да се представят  индивидуални  данни  за всяко  
предметно  стъкло  и животно . В допълнение  на това всички  
данни  следва  да се резюмират  в таблица . Следва  да се 
изчислят  количествата  на нето  ядрените  зрънца  (НЯЗ ) за всяка  
клетка , за всяко  животно  и всяка  доза и време  чрез изваждане  на 
ЦЗ бройки  от ЯЗ бройки . Ако се броят  „клетки  в репарация “, 
критериите  за дефиниране  на „клетки  в репарация “ следва  да се 
обосноват  и да се базират  на паралелни  отрицателни  контролни  
данни  или на такива  от предишни  изследвания . Цифровите  
резултати  могат  да се оценяват  чрез статистически  методи . 
Ако се използват , статистическите  тестове  следва  да се 
подберат  и обосноват  преди  провежедане  на изследването . 
2.2. ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Примерите  на критерии  за положителни /отрицателни  реакции  
включват : 
положителни  i) НЯЗ  стойности  над зададен  праг , 
обоснован  на базата  на лабораторни  данни  
от предишни  изследвания ; или 
ii) НЯЗ  стойности , значително  по-високи  от 
паралелни  контроли ; 
отрицателни  i) НЯЗ  стойности  в границите  на/под 
контролен  праг  от предишни  изследвания ; 
или 
ii) НЯЗ  стойности , незначително  по-високи  от 
паралелни  контроли . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 561
 
Следва  да се разгледа  биологическата  значимост  на данните : т.е. 
параметри  като изменчивост  между  животните , взаимодействие  
между  съотношението  доза-реакция  и цитотоксичност  следва  да 
се вземат  под внимание . При оценката  на резултатите  от теста  
като помощно  средство  биха  могли  да се използват  статист­  
ически  методи . Статистическата  значимост  не следва  да е 
единственият  решаващ  фактор  за положителна  реакция . 
Въпреки  че повечето  експерименти  дават  ясно  положителни  или 
отрицателни  резултати , в редки  случаи  наборът  данни  изключва  
правенето  на категорична  преценка  за активността  на тестваното  
вещество . Резултатите  могат  да останат  двузначни  или под 
въпрос , независимо  от това колко  пъти  е повторен  опитът . 
Положителен  резултат  от теста  за нерепаративен  синтез  на ДНК  
(НСД ) с чернодробни  клетки  от бозайници  in vivo  показва , че 
увреждането  на ДНК  с чернодробни  клетки  от бозайници  in vivo  
може  да се репарира  чрез нерепаративен  синтез  на ДНК  in vivo.  
Отрицателният  резултат  показва , че при условията  за 
провеждане  на теста  тестваното  вещество  не индуцира  ДНК  
увреждане , което  се открива  с настоящия  тест. 
Следва  да се обсъди  вероятността  тестуваното  вещество  да 
достигне  общото  кръвообращение  или конкретно  прицелната  
тъкан  (напр . системна  токсичност ). 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
ДОКЛАД  ЗА ТЕСТА  
Докладът  за теста  трябва  да включва  следната  информация : 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на носител , 
— разтворимост  и стабилност  на тестваното  вещество  в 
разтворител /носител , ако са известни . 
Опитни  животни : 
— вид/щам, 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— източник , условия  на отглеждане , начин  на хранене  и др., 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на теста , в т.ч. 
обхват  на телесното  тегло , средно  и стандартно  отклонение  
за всяка  група . 
Условия  за провеждане  на теста : 
— положителни  и отрицателни  носител /разтворител  контроли , 
— данни  от изследването  за установяване  на обхват , ако е 
проведено , 
— основна  причина  за избора  на нивото  на дозата , 
— подробности  за приготвянето  на тестваното  вещество , 
— подробности  за администрирането  тестваното  вещество , 
— основна  причина  за начина  на администриране , 
— методи  за проверка  дали  тестваният  агент  е достигнал  
общото  кръвообращение  или тъканта , която  е обект  на 
изследването , ако са приложими , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 562
 
— преминаване  от концентрация  (ррm) на тестваното  вещество  
в храната /питейната  вода  към действителната  доза (mg/kg 
телесно  тегло ), ако е приложимо , 
— подробности  за качеството  на храната  и водата , 
— подробно  описание  на графиците  на третиране  и вземане  на 
проби , 
— методи  на измерване  на токсичността , 
— метод  на подготовка  на чренодробни  клетки  и култура , 
— използван  авторадиографичен  способ , 
— брой  на подготвените  предметни  стъкла  и брой  на 
отчетените  клетки , 
— критерии  за оценка , 
— критерии  за считане  на изследванията  положителни , отриц­  
ателни  или двузначни . 
Резултати : 
— средни  стойности  на индивиудално  предметно  стъкло , 
животно  и група  за ядрени  зрънца , цитоплазмени  зрънца  и 
нето  ядрени  зрънца , 
— взаимоотношение  доза-реакция , където  е възможно , 
— статистическа  оценка , ако има такава , 
— признаци  на токсичност , 
— паралелни  отрицателни  (разтворител /носител ) и положителни  
контролни  данни , 
— отрицателни  (разтворител /носител ) от предишни  изследвания  
и положителни  контролни  данни  с обхват , средни  стойности  
и стандартни  отклонения , 
— брой  на „клетки  в репарация “, ако е определен , 
— брой  клетки  в S-фаза , ако е определен , 
— жизнеспособност  на клетките . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключения . 
4. Препратки  
(1) Ashby, J., Lefevre, P. A., Burlinson, B. and Penman, M. G. 
(1985), An Assessment of the In Vivo Rat Hepatocyte DNA Repair Assay, Mutation Res., 156, pp. 1—18.
 
(2) Butterworth, B. E., Ashby, J., Bermudez, E., Casciano, D., 
Mirsalis, J., Probst G. and Williams, G. (1987), A Protocol and Guide for the In Vivo Rat Hepatocyte DNA-Repair 
Assay, Mutation Res., 189, pp. 123—133.
 
(3) Kennelly, J. C, Waters, R., Ashby, J., Lefevre, P. A., Burlinson 
B., Benford, D. J., Dean, S. W. and Mitchell I. de G. (1993), In 
Vivo Rat Liver UDS Assay, in: Kirkland D. J. and Fox M., 
(eds.), Supplementary Mutagenicity Tests: UKEM Recom ­
mended Procedures. UKEMS Subcommittee on Guidelines for Mutagenicity Testing Report. Part II revised, Cambridge 
University Press, Cambridge, New York, Port Chester, 
Melbourne, Sydney, pp. 52—77.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 563
 
(4) Madle, S., Dean, S. W., Andrae, U., Brambilla, G., Burlinson, 
B., Doolittle, D. J., Furihata, C, Hertner, T., McQueen, C. A. 
and Mori, H. (1993), Recommendations for the Performance of UDS Tests In Vitro and In Vivo, Mutations Res., 312, pp. 263—285.
 
(5) Fautz, R., Hussain, B., Efstathiou, E. and Hechenberger-Freudl, 
C. (1993), Assessment of the Relation Between the Initital Viability and the Attachment of Freshly Isolated Rat Hepa ­
tocytes Used for the  In Vivo/In Vitro  DNA Repair Assay 
(UDS), Mutation Res., 291, pp. 21—27.
 
(6) Mirsalis, J. C, Tyson, C. K. and Butterworth, В. Е. (1982), 
Detection of Genotoxic Carcinogens in the In Vivo/In Vitro Hepatocyte DNA Repair Assay, Environ Mutagen, 4, pp. 
553—562.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 564
 
Б. 40.  IN VITRO  КОЖНА  КОРОЗИЯ : ТРАНСКУТАННО  
ИЗМЕРВАНЕ  НА ЕЛЕКТРИЧЕСКОТО  СЪПРОТИ­  
ВЛЕНИЕ  НА КОЖАТА  (TER)  
1. МЕТОД  
Този  метод  за измерване  е еквивалентен  на OECD TG 430 
(2004).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Кожната  корозия  се отнася  до причиняването  на необратими  
тъканни  увреждания  на кожата  вследствие  на прилагането  на 
материал  на изпитване  (както  е дефинирано  от Глобалната  
хармонизирана  система  за класификация  и етикетиране  на 
химични  вещества  и смеси  (GHS) (1). Този  метод  осигурява  
процедура , при която  оценката  на корозивността  не се 
извършва  върху  живи  животни . 
Оценката  на кожната  корозивност  обикновено  включва  
използване  на лабораторни  животни  (2). Загрижеността  за 
болката  и страданието  на животните , подложени  на тази 
процедура , се разглежда  в ревизирания  метод  на изпитване  
Б.4, позволяващ  определянето  на корозията  чрез използването  
на алтернативни , in vitro  методи , избягващи  болката  и 
страданието . 
Първата  стъпка  към дефинирането  на алтернативните  
изпитвания , които  биха  могли  да се използват  за изпитване  за 
кожна  корозивност  за законодателни  цели , бе провеждането  на 
предварителни  валидиращи  изследвания  (3). След  това бе 
проведено  официалното  валидиращо  изследване  на in vitro  
методите  за оценка  на кожната  корозия  (4)(5) (6)(7)(8). 
Резултатът  от тези изследвания  и друга  публикувана  литература  
доведе  до препоръката  да бъдат  използвани  следните  изпитвания  
при оценката  in vivo  на кожната  корозивност  (9)(10)(11): 
изпитване  върху  модел  на човешка  кожа  (виж също  метод  на 
изпитване  Б.40A и транскутанното  изпитване  за електрическо  
съпротивление  (този метод ). 
Валидиращото  изследване  и други  публикувани  изследвания  
сочат , че на транскутанното  изпитване  за електрическо  съпроти­  
вление  (TER) при плъхове  (12)(13) може  надеждно  да 
разграничи  познати  кожни  корозиви  и некорозиви  (5)(9).  
Изпитването , описано  в този метод , позволява  идент­  
ифицирането  на корозивни  химични  вещества  и смеси . Освен  
това, то дава възможност  за идентифициране  на некорозивните  
вещества  и смеси , когато  това се подкрепя  от доказателствено  
определяне  с помощта  на друга  съществуваща  информация  
(например  рН, структурно -активни  взаимовръзки , човешки  
и/или животински  данни ) (1)(2)(11)(14). То не осигурява  
информация  за кожните  дразнения , нито  пък ни позволява  да 
направим  подкатегоризация  на корозивните  вещества , както  ни 
разрешава  Глобалната  хармонизирана  система  за класификация  
(GHS) (1).  
За пълната  оценка  на локалните  кожни  ефекти  се препоръчва , 
след  еднократно  дермално  излагане  да се следва  последователна  
стратегия  на изпитване , както  е посочено  в приложението  към 
метод  на изпитване  Б.4 (2) и както  се изисква  от Глобалната  
хармонизирана  система  (1). Тази  стратегия  на изпитване  
включва  провеждането  на изпитване  in vitro  за корозия  на 
кожата  (както  е описано  в този метод ) и кожно  раздразнение  
преди  да се обмисля  изпитване  върху  живи  животни . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 565
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Кожна  корозия  in vivo  е причиняването  на необратимо  
увреждане  на кожата , а именно , видима  некроза  през 
епидермиса  и вътре  в дермиса , вследствие  прилагането  на 
вещество  за изпитване  за период  до четири  часа. Типични  
корозивни  реакции  са язви, кървене , кървящи  струпеи  и до 
края  на наблюдението , продължаващо  14 дена , обезцветяване , 
дължащо  се на избледняване  на кожата , цялостни  повърхности  
на алопеция  и белези . Хистопатологията  също  трябва  да се 
вземе  под внимание  при оценката  на спорните  лезии . 
Транскутанното  електрическо  съпротивление  (TER)  е мярка  
за електрическия  импеданс  на кожата , измерен  като съпроти­  
вление  в кОм (kilo Ohms). Един  прост  и сигурен  метод  за 
оценка  на бариерната  функцията  чрез регистриране  на премина­  
ването  на йони  през кожата  с помощта  на измервателния  мост  
на Уитстоун . 
1.3. РЕФЕРЕНТНИ  ВЕЩЕСТВА  
Таблица  1 
Референтни  химически  вещества  
Име EINECS No CAS No  
1,2-Диаминопропан  201-155-9 78-90-0 Силно  корозивен  
Акрилна  киселина  201-177-9 79-10-7 Силно  корозивен  
2-терт. бутилфенол  201-807-2 88-18-6 Корозивен  
Калиев  хидроксид  (10 %) 215-181-3 1310-58-3 Корозивен  
Сярна  киселина  (10 %) 231-639-5 7664-93-9 Корозивен  
Октанова  киселина  (каприлна  
киселина ) 204-677-5 124-07-02 Корозивен  
4-амино -1,2,4-триазол  209-533-5 584-13-4 Некорозивен  
Еугенол  202-589-1 97-53-0 Некорозивен  
Фенетил  бромид  203-130-8 103-63-9 Некорозивен  
Тетрахлоретилен  204-825-9 27-18-4 Некорозивен  
Изостеаринова  киселина  250-178-0 30399-84-9 Некорозивен  
4-(метилдио )-бензалдехид  222-365-7 3446-89-7 Некорозивен  
Повечето  от химическите  вещества , изброени  по-горе, са взети  
от списъка  на химикали , избрани  за международното  
валидиращо  изследване  на ECVAM (4). Техният  избор  е въз 
основа  на следните  критерии : 
i) равен  брой  корозивни  и некорозивни  вещества ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 566
 
ii) търговско  налични  вещества , обхващащи  повече  от съотв­  
етните  химични  класове ; 
iii) включване  на силно  корозивни , както  и на по-малко  
корозивни  вещества , за да се позволи  разделяне , въз 
основа  на корозивната  сила ; 
iv) избор  на химически  вещества , с които  да може  да се работи  
в лабораторни  условия , без да има излагане  на други  
сериозни  рискове , освен  на корозивност . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Материалът  на изпитването  се прилага  за период  до 24 часа 
върху  епидермалните  повърхности  на кожните  дискове  в 
опитната  постановка  с две отделения , при която  кожните  
дискове  функционират  като преграда  между  двете  отделения . 
Кожните  дискове  се вземат  от хуманно  убити  плъхове  на 
възраст  28—30 дни. Корозивните  материали  се идентифицират  
по способността  си да предизвикват  загуба  на нормалната  
цялост  на stratum corneum  и бариерната  функция , която  се 
изразява  като намаление  на TER под нивото  на прага  (12). За 
плъховете  за гранична  TER се избира  стойност  от 5 kΏ, като 
това се основава  на голям  брой  данни  за широк  кръг  химически  
вещества , при които  по-голямата  част от стойностите  са или 
определено  над (често  > 10 kΩ), или доста  под (често  < 3 kΩ) 
тази стойност  (12). Като  цяло , материалите , които  не са 
корозивни , но са дразнещи  или недразнещи  при животните , не 
намаляват  TER под тази референтна  стойност . Нещо  повече , 
използването  на кожни  препарати  или друга  апаратура  може  
да промени  граничната  стойност , като изисква  допълнително  
валидиране . 
Етап  за фиксиране  на оцветител  е включен  в процедурата  за 
изпитване  за потвърждение  на положителните  резултати  от 
TER, включващи  стойности  около  5 kΩ. Етапът  с фиксиране  
на оцветител  определя  дали  увеличаването  на йонната  прон­  
ицаемост  се дължи  на физическо  разрушаване  на stratum 
corneum.  Методът  TER, използващ  кожа  от плъхове , показва , 
че с него  могат  да се правят  предвиждания  за in vivo  корозив­  
ността  при зайци , оценявана  с помощта  на метода  за изпитване  
Б.4 (2). Трябва  да се отбележи , че изпитването  in vivo  при зайци  
е високо  консервативен  по отношение  на кожната  корозивност  и 
дразненето  на кожата , когато  се сравни  с изпитването  върху  
модел  на човешка  кожа  (15).  
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.5.1.  Животни  
Плъховете  са избраният  биологичен  вид, тъй като чувствит­  
елността  на кожата  им към химическите  вещества  в това 
изпитване  е била  демонстрирана  преди  това (10). Възрастта  
(когато  се взема  кожата ) и породата  на плъха  са особено  
важни , за да е сигурно , че фоликулите  на козината  им са в 
латентна  фаза  преди  да започне  растежа  на козината . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 567
 
Дорзалната  и странична  козина  от млади , на възраст  около  22 
дни, мъжки  и женски  плъхове  (от породата  Wistar или друга  
сравнима ), внимателно  се отстранява  с малки  пинцети . После  
животните  се измиват  с бавно  бърсане , като захваната  
повърхност  се потапя  в антибиотичен  разтвор  (съдържащ  
например  стрептомицин , пеницилин , хлорамфеникол  и 
амфотерицин , при концентрации , ефективни  за инхибирането  
на бактериалния  растеж ). Животните  се измиват  с антибиотици  
отново  на третия  или четвъртия  ден след  първото  измиване  и се 
използват  до три дни след  второто  миене , когато  stratum 
corneum  е възстановен  от отстраняването  на козината . 
1.5.2.  Подготовка  на кожните  дискове  
Животните  са убити  по хуманен  начин  на възраст  28—30 дена ; 
тази възраст  е критична . Дорзо -латералната  кожа  на всяко  едно  
животно  се отстранява  и от нея се премахва  излишната  
подкожна  мазнина  чрез внимателно  обелване  и отделяне  от 
кожата . Кожните  дискове , всеки  от които  с диаметър  от 
приблизително  20 mm, се отстраняват . Кожата  може  да се 
съхрани , преди  да се използват  дисковете , когато  е показано , 
че положителните  и отрицателни  контролни  данни  са еквив­  
алентни  на тези, получени  от прясна  кожа . 
Всеки  кожен  диск  се поставя  над единия  от краищата  на PTFE 
(политетрафлуороетиленова ) тръба , като се внимава  
епидермалната  повърхност  да бъде  в контакт  с тръбата . Гумен  
О-пръстен  се прикрепва  с натиск  в края  на тръбата , за да държи  
кожата , без тя да мърда , а излишната  тъкан  се изрязва . 
Размерите  на тръбата  и О-пръстена  са показани  на фигура  2. 
Гуменият  О-пръстен  внимателно  се запечатва  в края  на PTFE 
тръбата  с петролно  желе . Тръбата  се поддържа  от пружинена  
щипка  вътре  в рецепторната  камера , съдържаща  разтвор  
MgSO  4 (154 mM) ( фигура  1). КОЖНИЯТ  ДИСК  трябва  да бъде  
напълно  потопен  в разтвора  MgSO  4 . От един  единствен  плъх  
могат  да се получат  10—15 кожни  диска . 
Преди  да започне  изпитването , електрическото  съпротивление  
на двата  кожни  диска  се измерва  като процедура  за качествен  
контрол  за всяка  животинска  кожа . И двата  диска  трябва  да 
показват  стойности  на съпротивление  по-високи  от 10 KΩ, за 
да могат  останалите  дискове  да се използват  за изпитването . Ако 
стойността  на съпротивлението  е по-ниска  от 10 KΩ, останалите  
дискове  от тази кожа , не могат  да се използват . 
1.5.3.  Прилагане  на изпитването  и контролни  вещества  
За всяко  изследване  трябва  да се използват  едновременно  
положителни  и отрицателни  контроли , за да се осигурят  
адекватни  резултати  от експерименталния  модел . Трябва  да се 
използват  кожни  дискове  от едно  единствено  животно . Предл­  
аганите  положителни  и отрицателни  контролни  вещества  са 
съответно  10 М солна  киселина  и дестилирана  вода . 
Течните  вещества  на изпитване  (150 μL) се прилагат  равномерно  
върху  епидермалната  повърхност  вътре  в тръбата . Когато  се 
изпитват  твърди  материали , достатъчно  количество  от него  се 
разпределя  равномерно  по диска , за да се гарантира , че е 
покрита  пялата  повърхност  на епидермиса . Добавя  се 
дейонизирана  вода  (150 μL) върху  твърдото  вещество  и 
тръбата  леко  се разклаща . За да се постигне  максимален  
контакт  с кожата , може  да се наложи  твърдото  вещество  да се 
нагрее  до 30  o С, за се разтопи  или омекне  изпитваното  
вещество , или пък да се разтроши  и да стане  на гранули  или 
на прах . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 568
 
За всяко  изпитване  се използват  три кожни  диска  и контролно  
вещество . Изпитваните  вещества  се прилагат  за период  от 24 
часа при температура  20—23  o С. Изпитваното  вещество  се 
отстранява  чрез измиване  със струя  течаща  вода  до 30  o С, 
докато  повече  не може  да се отстранява  никакъв  материал . 
1.5.4.  Измервания  на TER  
Кожният  импеданс  се измерва , като се измерва  TER с помощта  на 
променлив  ток с ниско  напрежение  чрез измервателния  мост  на 
Уитстоун  (13). Общите  спецификации  на измервателния  мост  са 
1—3 Volt работно  напрежение , синусоидално  или правоъгълно  
променливо  напрежение  от 50—1 000 Hz и измервателен  обхват  
от поне  0,1—30 K Ω. Измервателният  мост  се използва  за 
валидиране  на измерени  индуктивност , капацитет , съпротивление  
до стойности  от 2 000 Н, 2 000 μF, и 2 MΩ, съответно  при честоти  
от 100 Hz или 1 kHz, като се използват  серии  от паралелни  стой­  
ности . За целите  на изпитването  TER за корозивност , 
измерванията  се записват  като съпротивление , при честота  от 
100 Hz и като се използват  серийни  стойности . Преди  измерването  
на електрическото  съпротивление  се намалява  повърхностното  
напрежение  на кожата , като се добавя  достатъчен  обем  70 % 
етанол , за да се покрие  епидермиса . След  няколко  секунди  
етанолът  се отстранява  от тръбата  и след  това тъканта  се 
хидратира  чрез добавяне  на 3 ml разтвор  на MgSO  4 (154 mM). 
Електродите  на измервателния  мост  се поставят  от двете  страни  
на кожните  дискове , за да може  да се измери  съпротивлението  в 
kΩ/кожен  диск  (фигура  1). Измеренията  и дължината  на 
електродите  под крокодилските  щипки  са показани  на фигура  2. 
Щипката , прикрепена  към вътрешния  електрод , се поставя  върху  
горния  край  на тръбата  от PTFE по време  на измерването  на 
съпротивлението , за да може  достатъчна  дължина  на електрода  
да бъде  потопена  в разтвора  на MgSO  4 . Външният  електрод  се 
позиционира  вътре  в рецепторната  камера , така че да се опре  на 
дъното  на камерата . Разстоянието  между  пружинената  щипка  и 
дъното  на PTFE тръбата  се поддържа  постоянно  (фигура  2), тъй 
като това разстояние  оказва  влияние  върху  получената  стойност  
на съпротивлението . Следователно , разстоянието  между  
вътрешния  електрод  и кожния  диск  трябва  да бъде  постоянно  и 
минимално  (1—2 mm).  
Ако измерваната  стойност  на съпротивлението  е по-висока  от 20 
kΩ, това може  да се дължи  на отлагането  на остатъци  от 
веществото  на изпитване  по епидермалната  повърхност  на 
кожния  диск . Може  да се предприеме  опит  за по-нататъшното  
отстраняване  на отлагането , например  като се запечата  PTFE 
тръбата  с палец  в ръкавица  и като се разклати  за около  10 
секунди ; разтворът  на MgSO  4 се изхвърля  и измерването  на 
резистентността  се повтаря  с пресен  разтвор . 
Свойствата  и размерите  опитната  постановка  и опитната  
процедура  могат  да повлияят  на получените  стойности  на 
TER. Корозивният  праг  от 5 kΩ е определен  въз основа  на 
данни , получени  от специфичната  опитна  постановка  и 
процедура , описани  в този метод . Различни  прагове  и 
контролни  стойности  могат  да бъдат  прилагани , ако условията  
на изпитване  се променят  или се използва  друга  опитна  поста­  
новка . Ето защо , е необходимо  да се калибрира  методологията  и 
праговите  стойности  на съпротивлението , като се изпитат  серии  
референтни  стандарти , избрани  от използваните  химически  
вещества  при валидиращото  изследване  (4)(5), или химични  
класове , подобни  на изследваните . Набор  от подходящи  
референтни  химически  вещества  е показан  в таблица  1. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 569
 
1.5.5.  Методи  за фиксиране  на оцветител  
Излагането  на определени  некорозивни  материали  може  да 
доведе  до намаляване  на съпротивлението  под границата  от 5 
kΩ, като това позволява  преминаването  на йоните  през stratum 
corneum,  като по този начин  се намалява  електрическото  
съпротивление  (5). Например , неутралните  неорганични  
вещества  и веществата , които  имат  повърхностно -активни  
свойства  (включително  детергенти , емулсификатори  и други  
повърхностноактивни  вещества ) могат  да отстранят  кожните  
мазнини , като по този начин  направят  бариерата  по-лесно  прон­  
ицаема  за йоните . Така , ако стойностите  TER на изпитваните  
вещества  са по-ниски  или около  5 kΩ при липса  на видимо  
увреждане , трябва  да се направи  оценка  на проникването  на 
оцветяващото  вещество  върху  контролните  и третираните  
тъкани , за да се определи  дали  получените  TER стойности  са 
в резултат  на повишена  кожна  проницаемост  или на кожна  
корозия  (3)(5). Във втория  случай , когато  stratum corneum  е 
разкъсан , когато  се приложи  към кожната  повърхност  бързо , 
оцветителят  сулфорходамин  В (sulforhodamine В) прониква  и 
оцветява  подлежащата  тъкан . Този  конкретен  оцветител  е 
устойчив  на широк  обхват  от химически  вещества  и не се 
влияе  от процедурата  на екстракция , описана  по-долу . 
1.5.5.1.  Приложение  и отстраняване  на оцветителя  сулфорходамин  В 
(sulforhodamine B)  
След  провеждане  на измерването  на TER магнезиевият  сулфат  
се отстранява  от тръбата  и кожата  се изследва  внимателно  за 
видими  увреждания . Ако няма  голямо  очевидно  увреждане  
оцветителят  сулфорходамин  В (Кисело  червено  52; C.I. 45100; 
EINECS номер  222-529-8; CAS номер  3520-42-1), 150 μL от 
10 % (w/v) разтвор  в дестилирана  вода , се нанася  върху  
епидермалната  повърхност  на всеки  кожен  диск  за период  от 2 
часа. Тези  кожни  дискове  след  това се измиват  в течаща  вода  
при стайна  температура , приблизително  за 10 секунди , за да се 
премахне  излишния /несвързан  оцветител . Всеки  кожен  диск  
внимателно  се отстранява  от PTFE тръбата  и се поставя  в 
контейнер  (например  20 mL стъклен  прозрачен  контейнер ), 
съдържащ  дейонизирана  вода  (8 mL). Контейнерите  леко  се 
разклащат  за 5 минути , за да се отстрани  всякакъв  допълнителен  
несвързан  оцветител . Тази  процедура  на изплакване  се повтаря , 
след  което  кожните  дискове  се отстраняват  и се поставят  в 
контейнери , съдържащи  5 ml от 30 % (w/v) натриев  додецил  
сулфат  (SDS) в дестилирана  вода  и се инкубират  за една  нощ 
при температура  60 o С. 
След  инкубирането  веки  кожен  диск  се отстранява  и изхвърля , а 
останалата  част от разтвора  се центрофугира  около  8 минути  
при 21  o С (относителна  центробежна  сила  ~175 х g). Проба  от 
1 ml от супернатанта  се разтваря  в 1 от 5 (v/v) (т.е 1 mL + 4 mL) 
c 30 % (w/v) SDS в дестилирана  вода . Оптичната  плътност  (OD) 
на разтвора  се измерва  при 565 nm.  
1.5.5.2.  Изчисляване  на съдържанието  на оцветител  
Съдържанието  на оцветителя  сулфорходамин  В се изчислява  от 
стойностите  OD (5) ( моларен  коефициент  на поглъщане  на 
оцветителя  сулфорходамин  В при 565 nm = 8,7 х 10  4 ; 
молекулно  тегло  = 580). Съдържанието  на оцветителя  се 
определя  за всеки  кожен  диск  с помощта  на калибрираща  
крива  и тогава  се изчислява  средното  съдържание  на 
оцветител  при тези потвърдителни  експерименти . 
2. ДАННИ  
Стойностите  на съпротивлението  (kΩ) и средните  стойности  на 
съдържанието  на оцветител  (μg/диск ), където  има такъв , за 
изпитвания  материал , както  за положителните , така и за отриц­  
ателните  контроли , трябва  да се докладват  в таблична  форма  
(данни  от индивидуалното  изпитание  и средните  стойности  ± 
S.D.), включително  данни  за потвърдителни /повторни  
експерименти , средни  и индивидуални  стойности . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 570
 
2.1. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Средните  резултати  за TER се приемат , ако едновременните  
положителни  и отрицателни  контролни  стойности  попадат  в 
допустимите  граници  за метода  в лаборатория  за изпитване . 
Допустимите  граници  на съпротивлението  за методологията  и 
опитната  постановка , описани  по-горе, са дадени  в следната  
таблица : 
Контрола  Вещество  Съпроти­  
вление  (к) 
Положителна  10М Солна  киселина  0,5—1,0 
Отрицателна  Дестилирана  вода  10—25  
Средните  резултати  при оцветяване  се приемат , при условие  че 
едновременните  контролни  стойности  попадат  в допустимите  
граници  за метода . Предлаганите  приемливи  обхвати  на 
съдържанието  на оцветител  за контролните  вещества  за методо­  
логията  и опитната  постановка , описани  по-горе, са дадени  в 
следната  таблица : 
Контрола  Вещество  Съдържание  
на оцветител  
(μg/диск ) 
Положителна  10М Солна  киселина  40—100 
Отрицателна  Дестилирана  вода  15—35  
Изпитваното  вещество  се счита  за некорозивно  спрямо  кожата : 
i) ако средната  стойност  на TER, получена  за изпитваното  
вещество , е по-голяма  от 5 kΩ, или 
ii) средната  стойност  на TER е по-малка  или равна  на 5 kΩ, и 
— кожният  диск  не показва  никакви  видими  увреждания , и 
— средното  съдържание  на оцветител  в диска  е доста  под 
средното  съдържание  на оцветител  в 10М НСl полож­  
ителна  контрола , получена  едновременно . 
Изпитваното  вещество  се счита  за корозивно  спрямо  кожата : 
i) ако средната  стойност  на TER е по-ниска  или равна  на 5 kΩ 
и кожният  диск  е очевидно  увреден , или 
ii) средната  стойност  на TER е по-малка  или равна  на 5 kΩ, и 
— кожният  диск  не показва  никакви  видими  увреждания , но 
— средното  съдържание  на оцветител  в диска  е по-голямо  
или равно  на средното  съдържание  на оцветител  в 10М 
НСl положителна  контрола , получена  едновременно . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 571
 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  следната  
информация : 
Изпитвани  и контролни  вещества : 
— химичното  наименование  (наименования ) като тези по 
IUPAC или CAS, CAS номер , ако е известен ; 
— чистота  и състав  на веществото  или препарата  (в процент  от 
теглото ) и физична  природа ; 
— физико -химични  свойства  като физично  състояние , рН, 
стабилност , разтворимост  във вода , имащи  отношение  за 
провеждане  на изследването ; 
— обработване  на изпитваните /контролните  вещества  преди  
изпитването , ако има такова  (например  загряване , смилане ); 
— стабилност , ако е известна . 
Лабораторни  животни : 
— вид и пол; 
— възраст  на животните , когато  са използвани  като донори ; 
— източник , условия  на отглеждане , хранене  и др.; 
— подробности  по подготовката  на кожата . 
Условия  на изпитване : 
— калибриращи  криви  за опитната  постановка ; 
— калибриращи  криви  за изпитването  на оцветяване ; 
— подробности  по използваната  процедура  на изпитване  за 
измервания  на TER;  
— подробности  по използваната  процедура  на изпитване  за 
определяне  на оцветяването , ако случаят  е такъв ; 
— описание  на всяко  изменение  на процедурата  на изпитване ; 
— описание  на използваните  критерии  за оценка . 
Резултати : 
— представяне  в табличен  вид на данните  от изпитването  за 
TER и за фиксиране  на оцветител  (ако случая  е такъв ) за 
отделните  животни  и отделните  кожни  проби ; 
— описание  на всички  наблюдавани  ефекти . 
Обсъждане  на резултатите . 
Изводи . 
4. ПРЕПРАТКИ  
1. OECD (2001) Harmonised Integrated Classification System for 
Human Health and Environmental Hazards of Chemical Substances and Mixtures. OECD Series on Testing and Assessment Number 
33. ENV/JM/MONO(2001)6, Paris. http://www.olis.oecd.org/olis/ 
2001doc.nsf/LinkTo/env-jm-mono(2001)6.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 572
 
2. Testing Method B.4. Acute Toxicity: Dermal Irritation/Corrosion.  
3. Botham, P.A., Chamberlain, M., Barratt, M.D., Curren, R.D., 
Esdaile, D.J., Gardner, J.R., Gordon, V.C., Hildebrand, B., 
Lewis, R.W., Liebsch, M., Logemann, P., Osborne, R., Ponec, M., Regnier, J.F., Steiling, W., Walker, A.P., and Balls, M. (1995). A prevalidation study on  in vitro  skin corrosivity 
testing. The report and recommendations of ECVAM 
Workshop 6. ATLA 23, 219—255.
 
4. Barratt, M.D., Brantom, P.G., Fentem, J.H., Gerner, I., Walker, 
A.P., and Worth, A.P. (1998). The ECVAM international vali ­
dation study on  in vitro  tests for skin corrosivity. 1. Selection 
and distribution of the test chemicals. Toxic. in Vitro 12, 471—482.
 
5. Fentem, J.H., Archer, G.E.B., Balls, M., Botham, P.A., Curren, 
R.D., Earl, L.K., Esdaile, D.J., Holzhütter, H.-G., and Liebsch, 
M. (1998). The ECVAM international validation study on  in 
vitro  tests for skin corrosivity. 2. Results and evaluation by the 
Management Team. Toxic. in Vitro 12, 483— 524.  
6. OECD (1996). Final Report of the OECD Workshop on Harmo ­
nization of Validation and Acceptance Criteria for Alternative Toxicological Test Methods, 62pp.
 
7. Balls, M., Blaauboer, B.J., Fentem. J.H., Bruner. L., Combes, 
R.D., Ekwall, B., Fielder. R.J., Guillouzo, A., Lewis, R.W., 
Lovell, D.P., Reinhardt, C.A., Repetto, G., Sladowski. D., Spielmann, H., and Zucco, F. (1995). Practical aspects of the validation of toxicity test procedures. The report and recommen ­
dations of ECVAM workshops. ATLA 23, 129—147.
 
8. ICCVAM (Interagency Coordinating Committee on the Validation 
of Alternative Methods). (1997). Validation and Regulatory Acceptance of Toxicological Test Methods. NIH Publication No. 
97-3981. National Institute of Environmental Health Sciences, 
Research Triangle Park, NC, USA. http://iccvam.niehs.nih.gov/ docs/guidelines/validate.pdf
 
9. ECVAM (1998). ECVAM News & Views. ATLA 26, 
275—280.  
10. ICCVAM (Interagency Coordinating Committee on the Vali ­
dation of Alternative Methods). (2002). ICCVAM evaluation of EpiDermTM, EPISKINTM (EPI-200), and the Rat Skin Transcu ­
taneous Electrical Resistance (TER) assay: In Vitro test methods 
for assessing dermal corrosivity potential of chemicals. NIH Publication No. 02-4502. National Toxicology Program Inte ­
ragency Center for the Evaluation of Alternative Toxicological 
Methods, National Institute of Environmental Health Sciences, 
Research Triangle Park, NC, USA. http://iccvam.niehs.nih.gov/ methods/epiddocs/epis_brd.pdf.
 
11. OECD (2002) Extended Expert Consultation Meeting on The In 
Vitro Skin Corrosion Test Guideline Proposal, Berlin, 1st - 2nd 
November 2001, Secretariat's Final Summary Report, 27  th 
March 2002, OECD ENV/EHS, available upon request from 
the Secretariat  
12. Oliver, G.J.A., Pemberton, M.A., and Rhodes, C. (1986). An  in 
vitro  skin corrosivity test -modificationsand validation. Fd. 
Chem. Toxicol. 24, 507—512.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 573
 
13. Botham, P.A., Hall, T.J., Dennett, R., McCall, J.C., Basketter, 
D.A., Whittle, E., Cheeseman, M., Esdaile, D.J., and Gardner, J. 
(1992). The skin corrosivity test  in vitro:  results of an interla ­
boratory trial. Toxic.  in vitro  6, 191—194.  
14. Worth AP, Fentem JH, Balls M, Botham PA, Curren RD, Earl 
LK, Esdaile DJ, Liebsch M (1998). An Evaluation of the 
Proposed OECD Testing Strategy for Skin Corrosion. ATLA 26: 709—720.
 
15. Basketter, D.A., Chamberlain, M., Griffiths, H.A., Rowson, M., 
Whittle, E., York, M. (1997). The classification of skin irritants 
by human patch test. Fd. Chem. Toxicol. 35, 845—852.  
16. Oliver G.J.A, Pemberton M.A and Rhodes C. (1988). An In 
Vitro model for identifying skin-corrosive chemicals. I. Initial 
Validation. Toxic. in Vitro. 2, 7—17.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 574
 
Фигура  1 
Опитна  постановка  за изпитване  на ТЕR върху  кожа  от плъхове
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 575
 
Фигура  2 
Размери  на използваните  политетрафлуороетиленова  (РTFЕ) и рецепторни  
тръби  и електроди
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 576
 
Критични  точки  на опитната  постановка , показана  по-горе : 
— вътрешният  диаметър  на тръбата  РТFЕ, 
— дължина  на електродите , подходяща  за РТFЕ тръбата  и 
рецепторната  тръба , такава , че кожният  диск  да не се 
докосва  от електродите  и такава , че електрод  със стандартна  
дължина  да е в контакт  с разтвора  на МgЅО4; 
— количеството  разтвор  на МgЅО4 в рецепторната  тръба  трябва  
да образува  такава  дълбочина , че да съответства  на нивото  в 
РТFЕ тръбата , както  е показано  на фигура  1; 
— кожният  диск  трябва  да бъде  достатъчно  добре  закрепен  за 
РТFЕ тръбата , така че електрическото  съпротивление  вярно  
да съответства  на свойствата  на кожата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 577
 
Б. 40А. IN VITRO  КОЖНА  КОРОЗИЯ : ИЗПИТВАНЕ  ВЪРХУ  
МОДЕЛ  НА ЧОВЕШКА  КОЖА  
1. МЕТОД  
Този  метод  на изпитване  е еквивалентен  на ОЕС D ТG 431 
(2004).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Кожната  корозия  се отнася  до причиняването  на необратими  
увреждания  на тъканта  на кожата  вследствие  прилагането  на 
материал  за изпитване  (както  се дефинира  от Глобалната  
хармонизирана  система  за класификация  и етикетиране  на 
химични  вещества  и смеси  (GHS) (1). Този  метод  на изпитване  
не изисква  използването  на живи  животни  или животински  
тъкани  за оценката  на корозивността  на кожата . 
Оценката  на корозивността  на кожата  обикновено  включва  
използването  на лабораторни  животни  (2). Загрижеността  за 
болката  и страданието  при прилагането  на тази процедура  е 
разгледана  в ревизирания  метод  на изпитване  Б.4, който  
позволява  определянето  на кожната  корозия  с помощта  на 
алтернативни  in vitro  методи , с които  се избягва  болката  и 
страданието  на животните . 
Първата  стъпка  към определянето  на алтернативните  тестове , 
които  биха  могли  да се приложат  за изпитване  на кожната  
корозивност  за регулаторни  цели , беше  да се проведат  
предварителни  валидиращи  изследвания  (3). След  това се 
направи  официално  проучване  на методите  in vitro  за оценката  
на кожната  корозия  (4)(5) (6)(7)(8). Резултатът  от тези 
изследвания  и от други  публикувана  литература  (9) доведе  до 
препоръката  да се използват  следните  изпитвания  за оценката  in 
vitro  на кожната  корозивност  (10)(11)(12)(13): изпитването  върху  
модел  на човешка  кожа  (този метод ) и транскутанното  
изпитване  за електрическо  съпротивление  (виж метод  на 
изпитване  Б.40). 
Валидиращите  изследвания  сочат , че изпитванията , включващи  
модели  на човешка  кожа  (3)(4)(5)(9), са в състояние  надеждно  да 
разграничат  между  познати  корозиви  на кожата  и некорозиви . 
Протокола  от изпитването  може  да даде  също  индикация  за 
разграничение  между  тежки  и по-леки  корозиви  за кожата . 
Изпитването , което  се описва  в този метод , позволява  да се 
идентифицират  корозивните  химични  вещества  и смеси . Той 
позволява  също  и понататъшното  идентифициране  на 
некорозивните  вещества  и смеси , когато  това се подкрепи  от 
доказано  определяне  с помощта  на съществуващата  информация  
(например  рН, структурно -активни  връзки , човешки  и/или 
животински  данни ) (1)(2)(13)(14). Изпитването  обикновено  не 
осигурява  адекватна  информация  за кожните  раздразнения , 
нито  пък позволява  подкатегоризацията  на корозивните  
вещества , както  е позволено  в Глобалната  хармонизирана  
система  за класификация  и етикетиране  на химични  вещества  
и смеси  (GНS) (1).  
За пълната  оценка  на локалните  кожни  ефекти  след  еднократно  
излагане  на кожата  се препоръчва  да се спазва  стратегията  за 
последователно  изпитване , която  е приложена  към тестови  
метод  Б.4 (2) и която  е описана  в Глобалната  хармонизирана  
система  (GНS) (1). Тази  стратегия  на изпитване  включва  
провеждането  на in vitro  тестове  за кожна  корозия  (както  са 
описани  в този метод ) и кожно  раздразнение  преди  да се 
обсъжда  изпитване  при живи  животни . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 578
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Кожна  корозия  in vitro : е причиняването  на необратимо  
увреждане  на кожата , а именно  видима  некроза  през епидермиса  
и вътре  в дермиса , вследствие  прилагането  на изпитвано  
вещество  за период  до 4 часа. Типичните  корозивни  реакции  
са язви, кървене , кървящи  струпеи , и до края  на наблюдението , 
продължаващо  14 дни, обезцветяване  поради  избеляване  на 
кожата , цели  участъци  с алопеция  и белези . Хистопатологията  
трябва  да се вземе  под внимание  при оценката  на спорните  
лезии . 
Клетъчна  жизнеспособност : параметър , измерващ  общата  
активност  на клетъчната  популация  (например  способността  на 
клетъчната  митохондриална  дехидрогеназа  да намалява  
жизнения  оцветител  МТТ ), която , в зависимост  от измерената  
крайна  точка  и използваната  процедура  на изпитване , корелира  с 
общия  брой  и/или виталност  на клетките . 
1.3. РЕФЕРЕНТНИ  ВЕЩЕСТВА  
Таблица  1 
Референтни  химикали  
Име № ЕINECS № САS 
1,2-Диаминопропан  201-155-9 78-90-0 Силно  корозивен  
Акрилна  киселина  201-177-9 79-10-7 Силно  корозивен  
2-терт. бутилфенол  201-807-2 88-18-6 Корозивен  
Калиев  хидроксид  (10 %) 215-181-3 1310-58-3 Корозивен  
Сярна  киселина  (10 %) 231-639-5 7664-93-9 Корозивен  
Октанова  киселина  (каприлна  
киселина ) 204-677-5 124-07-02 Корозивен  
4-амино -1,2,4-триазол  209-533-5 584-13-4 Некорозивен  
Еугенол  202-589-1 97-53-0 Некорозивен  
Фенетил  бромид  203-130-8 103-63-9 Некорозивен  
Тетрахлороетилен  204-825-9 27-18-4 Некорозивен  
Изостеаринова  киселина  250-178-0 30399-84-9 Некорозивен  
4-(метилдио )-бензалдехид  222-365-7 3446-89-7 Некорозивен  
Повечето  от изброените  химикали  са взети  от списъка  на 
химичните  вещества , селектиран  за международното  
валидиращо  изследване  на ЕСVАМ (4). изборът  им се 
основава  на следните  критерии : 
i) равен  брой  корозивни  и некорозивни  вещества ; 
ii) търговски  налични  вещества , обхващащи  по-голямата  част 
от съответните  химични  класове ; 
iii) включване  както  на силно  корозивни , така и на по-малко  
корозивни  вещества , за да се постигне  разграничаване , 
основаващо  се на корозивна  сила ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 579
 
iv) избор  на химични  вещества , с които  да може  да се работи  в 
лабораторни  условия , без да има излагане  на друг  риск , 
освен  корозивност . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Методът  на изпитване  се прилага  конкретно  към триизмерния  
модел  на човешка  кожа , който  се състои  поне  от реконструиран  
епидермис  с функционален  stratum  соrпеит . Корозивните  
материали  се идентифицират  по способността  им да 
предизвикват  намаляване  на клетъчната  жизнеспособност  
(която  се определя , например , като се прави  изпитване  за 
намаляване  на МТТ  (15) под определени  прагови  нива  на 
определени  периоди  от време  на въздействие . Принципът  на 
изпитанието  на модела  на човешка  кожа  се основава  върху  
хипотезата , че корозивните  химикали  могат  да проникват  в 
stratum соrпеит  чрез дифузия  или ерозия  и са цитотоксични  за 
лежащите  отдолу  слоеве  клетки . 
1.4.1.  Процедура  
1.4.1.1.  Модели  на човешка  кожа  
Моделите  на човешка  кожа  могат  да се създадат  или закупят  от 
търговски  фирми  (например  моделите  ЕрiDerm™ и ЕРISKIN™) 
(16)(17)(18)(19), или пък да бъдат  разработени  или конструирани  
в лабораторията  за изпитване  (20)(21). Признава  се, че 
използването  на човешка  кожа  е предмет  на национални  и 
международни  етични  съображения  и условия . Всеки  нов 
модел  трябва  да се валидира  (поне  до степента , описана  в 
1.4.1.1.2). Моделите  на човешка  кожа , използвани  при това 
изпитване  трябва  да отговарят  на следното : 
1.4.1.1.1. О б щ и у с л о в и я з а м о д е л а : 
Да се използват  човешки  кератиноцити  за конструирането  на 
епитела . Трябва  да са налични  множество  слоеве  от жизнес­  
пособни  епителни  клетки  под функционалния  stratum  соrпеит . 
Кожният  модел  може  да има също  и стромален  компонентен  
слой . Stratum соrпеит  трябва  да бъде  многослоен  с необходимия  
липиден  профил , за да образува  функционална  бариера  със 
здравина , за да може  да устоява  на бързото  проникване  на 
цитотоксични  маркери . Свойствата  на задържане  на модела  
трябва  да възпрепятстват  преминаването  на материала  около  
stratum соrпеит  към жизнената  тъкан . Преминаването  на 
изпитваните  химични  вещества  около  stratum соrпеит  би 
довело  до лошо  моделиране  на излагането  на кожата . Моделът  
на кожа  трябва  да не е заразен  с бактерии  (включително  
микоплазма ) и фунги . 
1.4.1.1.2. У с л о в и я н а ф у н к ц и о н а л н и я м о д е л : 
Силата  на жизнеспособност  обикновено  се измерва  колич­  
ествено  с помощта  на МТТ  или други  метаболитно  
преобразувани  жизнени  оцветители . В тези случаи  оптичната  
плътност  (ОD), извлеченият  (разредим ) оцветител  от отрицат­  
елната  контролна  тъкан  трябва  да бъде  поне  20-кратно  по- 
голяма  от ОD на извличащия  разтворител  (за преглед  вижте  
(22). Отрицателната  контролна  тъкан  трябва  да бъде  стабилна  
в култура  (да осигурява  измервания  с подобна  надеждност ) за 
цялата  продължителност  на периода  на излагане  по време  на 
изпитването . Stratum соrпеит  трябва  да бъде  достатъчно  здрав , 
за да устои  на бързото  проникване  на цитотоксични  маркерни  
химикали  (например  1 % Тriton Х-100). Това  свойство  може  да 
се прецени  чрез времето  на излагане , което  се изисква  за 
намаляване  на клетъчната  жизнеспособност  с 50 % (ЕТ 50 ) (т.е. 
за моделите  EpiDerm™ и EPISKIN™ то е > 2 часа). Тъканта  
трябва  да показва  възпроизводимост  във времето  и за предп­  
очитане  е и в различни  лаборатории . Освен  това тя трябва  да 
може  да предвижда  корозивния  потенциал  на референтните  
вещества  (вижте  таблица  1), когато  се използва  в избрания  
протокол  за изпитване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 580
 
1.4.1.2.  Прилагане  на изпитваните  и контролните  вещества  
Използват  се два тъканни  репликата  за всяко  обработване  (време  
на излагане ), включително  и контроли . За течните  материали  
трябва  да се нанесе  достатъчно  изпитвано  вещество , за да се 
разпредели  равномерно  по кожна  повърхност : трябва  да се 
използва  минимум  25 μL/cm  2 . За твърдите  материали , трябва  
да се нанесе  достатъчно  изпитвано  вещество , което  да покрие  
равномерно  кожата , и то трябва  да се овлажни  с дейонизирана  
или дестилирана  вода , за да направи  добър  контакт  с кожата . 
Когато  е необходимо , твърдите  вещества  трябва  да бъдат  смлени  
на прах  преди  използване . Методът  на нанасяне  трябва  да бъде  
подходящ  за изпитваното  вещество  (вижте  справка  5). В края  на 
периода  на излагане  изпитваният  материал  трябва  внимателно  да 
се измие  от повърхността  на кожата  с подходящ  буфер  или 
0,9 % NаСl. 
За всяко  проучване  трябва  едновременно  да се използват  полож­  
ителни  и отрицателни  контроли , за да осигурят  адекватни  
резултати  на експерименталния  модел . Препоръчваните  
вещества  за положителни  контроли  са чиста  оцетна  киселина  
или 8N КОН . Препоръчваните  вещества  за отрицателни  
контроли  са 0,9 % N аСl или вода . 
1.4.1.3.  Измервания  на клетъчната  жизнеспособност  
За измерването  на клетъчната  жизнеспособност  трябва  да се 
използват  само  валидирани  количествени  методи . Освен  това, 
измерването  на жизнеспособността  трябва  да бъде  съвместимо  
с използването  на триизмерна  тъканна  конструкция . 
Фиксирането  на неспецифичен  оцветител  не трябва  да пречи  
на измерването  на клетъчната  жизнеспособност . Следователно , 
протеиносвързващи  оцветители  и онези , които  не претърпяват  
метаболитно  преобразуване  (т.е. неутрално  червено ), не са 
подходящи . Най-често  използваното  изпитване  е за намаляване  
на МТТ  [3-(4,5- диметилтиазол -2у1)-2,5-дифенилтетразолиев  
бромид , Тиазолил  син: номер  ЕINЕСS 206-069-5, СА8-номер  
298-93-1)], което  е доказало , че дава точни  и възпроизводими  
резултати  (5), но могат  да се използват  и други . Кожната  проба  
се поставя  в разтвор  на МТТ  със съответната  концентрация  
(т.е. 0,3 — 1 mg/mL) при подходяща  инкубационна  температура  
за период  от 3 часа. След  това утаеният  син продукт  формазан  
се извлича  с помощта  на разтворител  (изопропанол ), а конце­  
нтрацията  на формазан  се измерва , като се определели  ОD при 
дължина  на вълната  между  540 и 595 nm.  
Химичното  действие  на изпитвания  материал  върху  жизнения  
оцветител  прилича  това на клетъчния  метаболизъм , което  води  
до невярна  оценка  на жизнеспособността . Това  се случва , когато  
такъв  изпитван  материал  не се отстрани  напълно  от кожата  чрез 
изплакване  (9). Ако изпитваният  материал  действа  пряко  на 
жизнения  оцветител , трябва  да се използват  допълнителни  
контроли , за да се открие  и коригира  влиянието  на изпитваните  
вещества  върху  измерването  на жизнеспособността  (9)(23).  
2. ДАННИ  
За всяка  тъкан  в таблична  форма  трябва  да се докладват  стой­  
ностите  на ОD и изчисленият  процент  клетъчна  жизнес­  
пособност  на изпитвания  материал , положителните  и отриц­  
ателни  контроли , включително  данните  от повторните  
експерименти , там където  са направени , както  и средните  и 
индивидуални  стойности . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 581
 
2.1. ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Получените  стойности  на ОD за всяка  изпитвана  проба  могат  да 
се използват  за изчисляването  на процентната  жизнеспособност  
в сравнение  с отрицателната  контрола , която  произволно  е 
определена  на 100 %. Граничната  процентна  стойност  на 
клетъчната  жизнеспособност , разграничаваща  корозивните  от 
некорозивните  изпитвани  материали  (или разграничаваща  
между  различните  корозивни  класове ), или статистически  
процедури , използвани  при оценката  на резултатите  и идент­  
ифицирането  на корозивните  материали , трябва  ясно  да бъдат  
дефинирани  и документирани , както  и да бъде  обосновано , че са 
подходящи . Общо  взето , тези гранични  стойности  са установени  
по време  на оптимизирането  на изпитването , изпитване  по време  
на предварителната  валидация  и потвърдени  по време  на 
валидиращото  изследване . Един  пример , предвиждането  на 
корозивността , свързвана  с модела  ЕpiDerm™ е (9): 
Изпитваното  вещество  се счита  за корозивно  за човешката  кожа : 
i) ако жизнеспособността  му след  3 минути  на излагане  е по- 
малка  от 50 %, или 
ii) ако жизнеспособността  след  3 минути  на излагане  е по- 
голяма  или равна  на 50 %, а жизнеспособността  след  1 час 
на излагане  е по-малка  от 15 %.  
Изпитваното  вещество  се счита  за некорозивно  за човешката  
кожа : 
i) ако жизнеспособността  след  3 минути  на излагане  е по-голяма  
или равна  на 50 %, а жизнеспособността  след  1 час на 
излагане  е по-голяма  или равна  на 15 %.  
3. ДОКЛАДВАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  
информация : 
Изпитвано  и контролно  вещество : 
— химично  наименование  (наименования ) като по IUРАС  или 
по САS и САS номер , ако е известен ; 
— чистота  и състав  на веществото  или препарата  (в проценти  
от теглото ); 
— физико -химични  свойства  като физично  състояние , рН, 
стабилност , разтворимост  във вода , които  имат  отношение  
за провеждането  на изследването ; 
— обработка  на изпитваните /контролните  вещества  преди  
изпитването , ако има такава  (като нагряване , смилане ); 
— стабилност , ако е известна . 
Обосновка  на използвания  кожен  модел  и протокол . 
Условия  на изпитване : 
— използвана  клетъчна  система ; 
— информация  за калибрирането  на уреда , използван  за 
измерване  на клетъчната  жизнеспособност  (например  
спектрофотометър ); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 582
 
— пълна  придружаваща  информация  за конкретния  използван  
модел  на кожа , включително  и валидността  му; 
— подробности  за използваната  процедура  на изпитване ; 
— използвани  дози  на изпитване ; 
— описание  на всякакви  модификации  на процедурата  на 
изпитване ; 
— препратка  към историческите  данни  за модела ; 
— описание  на използваните  критерии  за оценка . 
Резултати : 
— таблично  представяне  на данните  от индивидуалните  проби  
на изпитване ; 
— описание  на други  наблюдавани  ефекти . 
Обсъждане  на резултатите . 
Заключение . 
4. ПРЕПРАТКИ  
1. OECD (2001) Harmonised Integrated Classification System for 
Human Health and Environmental Hazards of Chemical Substances and Mixtures. OECD Series on Testing and Assessment Number 33. ENV/JM/MONO(2001)6, Paris. http://www.olis.oecd.org/olis/ 
2001doc.nsf/LinkTo/env-jm-mono(2001)6.
 
2. Testing Method B.4. Acute Toxicity: Dermal Irritation/Corrosion.  
3. Botham, P.A., Chamberlain, M., Barratt, M.D., Curren, R.D., 
Esdaile, D.J., Gardner, J.R., Gordon, V.C., Hildebrand, B., Lewis, R.W., Liebsch, M., Logemann, P., Osborne, R., Ponec, M., Regnier, J.F., Steiling, W., Walker, A.P., and Balls, M. 
(1995). A prevalidation study on in vitro skin corrosivity 
testing. The report recommendations of ECVAM Workshop 6 ATLA 23,219-255.
 
4. Barratt, M.D., Brantom, P.G., Fentem, J.H., Gerner, I., Walker, 
A.P., and Worth, A.P. (1998). The ECVAM international vali ­
dation study on in vitro tests for skin corrosivity. 1. Selection 
and distribution of the test chemicals. Toxic. In Vitro 12, 
471—482.  
5. Fentem, J. H., Archer, G. E. B., Balls, M., Botham, P. A., 
Curren, R. D., Earl, L. K., Esdaile, D. J., Holzhutter, H. G. and Liebsch, M. (1998). The ECVAM international validation 
study on in vitro tests for skin corrosivity. 2. Results and 
evaluation by the Management Team. Toxic.  In Vitro  12, 
483—524.
 
6. OECD (1996). Final Report of the OECD Workshop on Harmo ­
nization of Validation and Acceptance Criteria for Alternative 
Toxicological Test Methods, 62pp.  
7. Balls, M., Blaauboer, B. J., Fentem, J. H., Bruner, L., Combes, 
R. D., Ekwall, B., Fielder, R. J., Guillouzo, A., Lewis, R. W., Lovell, D. P., Reinhardt, C. A., Repetto, G., Sladowski, D., Spielmann, H., and Zucco, F. (1995). Practical aspects of the 
validation of toxicity test procedures. Test report and recom ­
mendations of ECVAM workshops. ATLA 23, 129—147.
 
8. ICCVAM (Interagency Coordinating Committee on the Validation 
of Alternative Methods). (1997). Validation and Regulatory Acceptance of Toxicological Test Methods. NIH Publication No. 97-3981. National Institute of Environmental Health Sciences, 
Research Triangle Park, NC, USA. http://iccvam.niehs.nih.gov/ 
docs/guidelines/validate.pdf.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 583
 
9. Liebsch, M., Traue, D., Barrabas, C, Spielmann, H., Uphill, P., 
Wilkins, S., McPherson, J. P., Wiemann, C, Kaufmann, T., 
Remmele, M. and Holzhutter, H. G. (2000). The ECVAM prevalidation study on the use of EpiDerm for skin Corrosivity testing. ATLA 28, pp.371—401.
 
10. ECVAM (1998). ECVAM News & Views. ATLA 26, 
275—280.  
11. ECVAM (2000). ECVAM News & Views. ATLA 28, 365—67.  
12. ICCVAM (Interagency Coordinating Committee on the Vali ­
dation of Alternative Methods). (2002). ICCVAM evaluation 
of EpiDermTM, EPISKINTM (EPI-200), and the Rat Skin 
Transcutaneous Electrical Resistance (TER) assay: In Vitro test methods for assessing dermal corrosivity potential of chemicals. NIH Publication No. 02-4502. National Toxicology 
Program Interagency Center for the Evaluation of Alternative 
Toxicological Methods, National Institute of Environmental Health Sciences, Research Triangle Park, NC, USA. httpV/iccvam. niehs.nih.gov/methods/epiddocs/episjDrd.pdf.
 
13. OECD (2002) Extended Expert Consultation Meeting on The In 
Vitro Skin Corrosion Test Guideline Proposal, Berlin, 1st—2nd 
November 2001, Secretariat's Final Summary Report, 27th March 2002, OECD ENV/EHS, available upon request from 
the Secretariat
 
14. Worth A. P., Fentem J. H., Balls M., Botham P. A., Curren R. 
D., Earl L. K., Esdaile D. J., Liebsch M. (1998). An Evaluation of the Proposed OECD Testing Strategy for Skin Corrosion. ATLA 26: 709—720.
 
15. Mosmann, T. (1983). Rapid colorimetric assay for cellular 
growth and survival: application to proliferation and cytoto ­
xicity asssays. J.Immunol. Meth. 65, 55—63.  
16. Cannon, C. L., Neal, P. J., Southee, J. A., Kubilus, J., and 
Klausner, M., 1994. New epidermal model for dermal 
irritancy testing. Toxic. In Vitro 8, 889—891.  
17. Ponec, M., Boelsma, E., Weerheim, A., Mulder, A., Boutwstra, 
J., and Mommaas, M., 2000. Lipid and ultrastructural characte ­
rization of reconstructed skin models. International Journal of 
Pharmaceutics. 203, 211—225.  
18. Tinois E., Gaetani Q., Gayraud B., Dupont D., Rougier A., 
Pouradier D. X. (1994). The Episkin model: Successful recon ­
struction of human epidermis in vitro. In In vitro Skin Toxi ­
cology. Edited by A Rougier, AM Goldberg and HI Maibach: 
133—140  
19. Tinois E., Tiollier J., Gaucherand M., Dumas H., Tardy M., 
Thivolet J. (1991). In vitro and post - transplantation differen ­
tiation of human keratinocytes grown on the human type IV 
collagen film of a bilayered dermal substitute. Experimental Cell Research 193: 310—319
 
20. Parentau, N. L., Bilbo, P., Molte, C. J., Mason, V. S., and 
Rosenberg, H. (1992). The organotypic culture of human skin 
keratinocytes and fibroblasts to achieve form and function. Cytotechnology 9, 163—171.
 
21. Wilkins, L. M., Watson, S. R., Prosky, S. J., Meunier, S. F., 
Parentau, N. L. (1994). Development of a bilayered living skin 
construct for clinical applications. Biotechnology and Bioengi ­
neering 43/8, 747—756.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 584
 
22. Marshall, N. J., Goodwin, C. J., Holt, S. J. (1995). A critical 
assessment of the use of microculture tetrazolium assays 
to measure cell growth and function. Growth Regulation 5, 69—84.
 
23. Fentem, J. H., Briggs, D., Chesne', C, Elliot, G. R., Harbell, J. 
W., Heylings, J. R., Portes, P., Rouget, R., and van de Sandt, J. 
J. M., and Botham, P. A. (2001). A prevalidation study on in vitro tests for acute skin irritation: results and evaluation by the Management Team. Toxic. In VItro 15, 57—93.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 585
 
Б.41. IN VITRO  3T3 NRU ИЗПИТВАНЕ  ЗА ФОТОТОКСИЧНОСТ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на OECD TG 432 (2004).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Фототоксичността  се определя  като токсичната  реакция  от 
приложено  върху  тялото  вещество , която  се проявява  или 
увеличава  (и е забележима  при ниски  дози ) след  последващо  
излагане  на светлина  или се предизвиква  от облъчване  на 
кожата  след  систематично  прилагане  на дадено  вещество . 
Изпитването  за фототоксичност  in vitro  3Т3 NRU се използва  за 
идентифициране  на фототоксичния  потенциал  на изпитваното  
вещество , индуциран  от веществото , активирано  след  излагане  
на светлина . Изпитването  прави  оценка  на фотоцитотоксич­  
ността , като сравнява  намаляването  на жизнеспособността  на 
клетките , изложени  на веществото  в присъствие  и отсъствие  
на светлина . Веществата , които  се идентифицират  с помощта  
на настоящото  изпитване , има вероятност  да са фототоксични  
in vivo  вследствие  на систематично  прилагане  и разпределение  
по кожата  или след  локално  приложение . 
Известно  е, че много  видове  химични  вещества  предизвикват  
фототоксични  ефекти  (1)(2)(3)(4). Общият  признак  между  тях е 
способността  им да абсорбират  светлинна  енергия  в границите  на 
спектъра  на слънчевата  светлина . Според  първия  закон  на фотох­  
имията  (Закон  на Grotthaus-Draper), фотореакцията  изисква  дост­  
атъчна  абсорбция  на светлинни  кванти . По този начин , преди  да 
се предприеме  биологично  изпитване , следва  да се определи  
абсорбционният  спектър  UV/vis на изпитваното  вещество  според  
насоките  за изпитване  на OECD 101. Предполага  се, че ако коеф­  
ициентът  на моларно  поглъщане /абсорбция  е по-нисък  от 10 литра  
× mol  -1 × cm  -1 , не е вероятно  химичното  вещество  да е 
фотореактивно . Такова  вещество  не е необходимо  да се изпитва  с 
in vitro  3Т3 NRU за фототоксичност  или с други  биологични  
изпитвания  за неблагоприятни  фотохимични  реакции  (1)(5). Вж. 
също  приложение  1. 
Надеждността  и приложимостта  на изпитването  in vitro  3Т3 
NRU за фототоксичност  бяха  наскоро  оценени  (6)(7)(8) (9). 
Изпитването  in vitro  3Т3 NRU за фототоксичност  показа , че с 
него  може  да се предвижда  остра  фототоксичност  при животни  
и хора  in vivo.  Той не е замислен  да предвижда  други  неблаг­  
оприятни  ефекти , които  могат  да се породят  от комбинираното  
действие  на веществото  и светлината , напр . той не се отнася  за 
фотогенотоксичност , фотоалергии  или фотоканцерогенност , 
нито  пък позволява  да се направи  оценка  на фототоксичната  
сила . Освен  това изпитването  не е проектирано  да се занимава  
с индиректните  механизми  на фототоксичността , ефектите  от 
метаболитите  на изпитваното  вещество  или ефектите  от смесите . 
Докато  използването  на метаболизиращи  системи  е общо  
изискване  за всички  изпитвания  in vitro  за предвиждане  на 
генотоксичен  и канцерогенен  потенциал , досега  във фототоксик­  
ологията  съществуват  много  редки  примери , в които  е необ­  
ходима  метаболитна  трансформация , за да може  определено  
вещество  да действа  като фототоксин  in vivo  или in vitro.  
Поради  това се счита , че нито  е необходимо , нито  е научно  
оправдано  настоящото  изпитване  да се провежда  при система  
на метаболитно  активиране . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 586
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Облъчване : интензитет  на ултравиолетовата  (UV) или видимата  
светлина , която  попада  върху  дадена  повърхност , измерен  в 
W/m  2 или mW/cm  2 . 
Светлинна  доза : количество  (=интензитет  × време ) на 
ултравиолетовото  (UV) или видимото  лъчение , което  попада  
върху  дадена  повърхност , изразено  в джаули  (= W × s) на 
повърхностна  площ , напр . J/m  2 или J/cm  2 . 
Диапазони  на UV светлината : препоръчваните  от СIE (Com­
mission Internationale de L'Eclairage) обозначения  са UVA 
(315—400 nm), UVB (280—315 nm) и UVC (100—280 nm). 
Използват  се и други  обозначения ; границата  между  UVB и 
UVA често  се поставя  на 320 nm, a UVA може  да се раздели  
на UV-A1 и UV-A2, като границата  се поставя  на около  340 nm.  
Клетъчна  жизнеспособност : параметър , измерващ  общата  
активност  на клетъчната  популация  (напр . поглъщането  на 
жизнения  оцветител  неутрално  червено  в клетъчните  лизозоми ), 
който  в зависимост  от измерваната  крайна  точка  и използваната  
процедура  на изпитване  корелира  с общия  брой  и/или 
жизнеността  на клетките . 
Относителна  клетъчна  жизнеспособност : клетъчната  жизнес­  
пособност , изразена  спрямо  разтворител  (отрицателни ) 
контроли , взети  по време  на пялата  процедура  на изпитване  
(+Irr или –Irr), но нетретирани  с веществото  на изпитване . 
PIF (Photo-Irritation-Factor — фактор  на фотодразнене ): 
фактор , получен  при сравняването  на две еднакво  ефективни  
цитотоксични  концентрации  (IC  50 ) от изпитваното  вещество , 
получен  в отсъствието  (–Irr) или присъствието  (+Irr) на нецит­  
отоксично  облъчване  с UVA/vis светлина . 
IC 50 : концентрацията  на изпитваното  вещество , при която  
клетъчната  жизнеспособност  намалява  с 50 %.  
МРЕ  (среден  фотоефект ): измерване , получено  с помощта  на 
математически  анализ  на кривите  на реакция  на концентрация , 
получени  в отсъствието  (–Irr) или присъствието  (+Irr) на 
нетоксично  облъчване  с UVA/vis светлина . 
Фототоксичност : остра  токсична  реакция , която  се предизвиква  
след  първото  излагане  на кожата  на определени  химични  
вещества  и последващо  излагане  на светлина  или предизвикана  
по подобен  начин  от облъчване  на кожата  след  систематично  
прилагане  на химично  вещество . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитването  in vitro  3Т3 NRU за фототоксичност  се основава  на 
сравняването  на цитотоксичността  на едно  вещество , когато  се 
изпитва  в присъствието  или отсъствието  на излагане  на 
цитотоксична  доза симулирана  слънчева  светлина . Цитотоксич­  
ността  в това изпитване  се изразява  като намаляване , зависещо  
от концентрацията , на поглъщането  на жизнения  оцветител  
неутрално  червено  (НЧ), когато  се измерва  24 часа след  
третирането  с изпитваното  вещество  и облъчване  (10). НЧ е 
слаб  катионен  оцветител , който  лесно  прониква  през клетъчната  
мембрана  чрез недифузия , като се акумулира  вътрешноклетъчно  
в лизозомите . Промените  по повърхността  на чувствителната  
лизозомна  мембрана  водят  до лизозомна  крехкост  и други  
промени , които  постепенно  стават  необратими . Подобни  
промени , предизвикани  от действието  на ксенобиотици , водят  
до намалено  поглъщане  и свързване  на НЧ. По този начин  е 
възможно  да се направи  разграничение  между  жизнеспособни , 
увредени  и мъртви  клетки , което  е смисълът  на настоящото  
изпитване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 587
 
Balb/c 3T3 клетките  се поддържат  в култура  в продължение  на 
24 часа, за да се образуват  монослоеве . По две 96-гнездни  
плочки  на изпитвано  вещество  предварително  са инкубирани  с 
осем  различни  концентрации  на изпитваното  вещество  за период  
от 1 час. След  това една  от тези две плочки  се излага  на най- 
високата  доза цитоксично  облъчване , докато  другата  плочка  се 
съхранява  на тъмно . После  в двете  плочки  средата  на третиране  
се сменя  с културна  среда  и след  още 24 часа инкубиране  
клетъчната  жизнеспособност  се определя  чрез поглъщането  на 
НЧ. Клетъчната  жизнеспособност  се изразява  като процент  от 
нетретираните  контроли  от разтворители  и се изчислява  за всяка  
концентрация  на изпитване . За да се предскаже  цитотоксичният  
потенциал , се сравняват  получените  реакции  на концентрация  в 
присъствието  или отсъствието  на облъчване , обикновено  на 
ниво  IC  50 , т.е. концентрация , намаляваща  клетъчната  жизнес­  
пособност  с 50 % в сравнение  с нетретираните  контроли . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.4.1.  Подготовка  
1.4.1.1.  Клетки  
За валидиращото  проучване  са използвани  постоянна  линия  от 
фибробластни  клетки  на мишки , Balb/c 3T3, клон  31, или от 
Американската  банка  за типови  култури  (АТСС ), Манасас , 
Вирджиния , САЩ , или от Европейската  банка  на клетъчни  
култури  (ЕСАСС ), Салисбъри , Уилтшир , Обединеното  
кралство , и затова  се препоръчва  клетъчните  култури  да се 
получават  от добре  квалифицирани  клетъчни  банки . Други  
клетки  или клетъчни  линии  могат  да се използват  за същата  
процедура  на изпитване , ако условията  на отглеждане  на 
културите  са адаптирани  към специфичните  нужди  на 
клетките , но еквивалентността  следва  да се докаже . 
Клетките  следва  да се проверяват  редовно  за отсъствие  на 
микоплазмено  заразяване  и да се използват  само  ако не се 
открива  такова  (11).  
Важно  е UV чувствителността  на клетките  да се проверява  
редовно  съгласно  качествения  контрол , описан  в настоящия  
метод . Тъй като UV чувствителността  на клетките  може  да се 
увеличи  с броя  на преминаванията , следва  да се използват  Balb/c 
3Т3 клетки  с най-нисък  брой  на преминавания , който  може  да се 
получи , за предпочитане  по-нисък  от 100 (Вж. точка  1.4.2.2.2 и 
приложение  2). 
1.4.1.2.  Условия  за средата  и отглеждането  на културите  
Следва  да бъдат  осигурени  подходящи  условия  за средата  и 
инкубация  за рутинното  преминаването  на клетки  и по време  
на процедурата  на изпитване , напр . за Balb/c 3T3 това са 
DMEM (Dulbecco's modified Eagle's medium), в съчетание  с 
10 % серум  от новородено  теле, 4 mМ глутамин , пеницилин  
(100 IU) и стрептомицин  (100 ( μg/ml), както  и влажна  
инкубация  при 37  o С, 5 — 7,5 % СО 2 в зависимост  от буфера  
(вж. точка  1.4.1.4, втори  параграф ). Особено  важно  е условията  
за отглеждане  на клетъчните  култури  да осигуряват  време  за 
клетъчния  цикъл  в нормалния  исторически  обхват  на 
използваните  клетки  и клетъчни  линии . 
1.4.1.3  Изготвяне  на културите  
Клетките  от замразения  запас  от култури  се посяват  в 
хранителна  среда  с подходяща  плътност  и се субкултивират  
поне  веднъж , преди  да бъдат  използвани  при изпитването  in 
vitro  3Т3 NRU за фототоксичност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 588
 
Клетките , използвани  за изпитването  за фототоксичност , се 
посяват  в хранителна  среда  с подходяща  плътност , така че 
културите  да не достигат  сливане  до края  на изпитването , т.е. 
когато  клетъчната  жизнеспособност  се определя  48 часа след  
посяването  на клетките . За клетките  Balb/c 3 Т3, отгледани  
в 96-гнездни  плочки , препоръчителната  гъстота  на клетките  е 
1 × 10  4 клетки  на гнездо . 
За всяко  изпитвано  вещество  клетките  се посяват  еднакво  в две 
отделни  96-гнездни  плочки , които  преминават  едновременно  
през пялата  процедура  на изпитване  при еднакви  условия  за 
културите , с изключение  на периода  време , през който  едната  
от плочките  се подлага  на облъчване  (+Irr), a другата  се 
съхранява  на тъмно  (–Irr).  
1.4.1.4.  Подготовка  на изпитваното  вещество  
Изпитваните  вещества  следва  да са прясно  приготвени  
непосредствено  преди  употреба , освен  ако няма  данни , които  
доказват  тяхната  стабилност  при съхранение . Препоръчва  се 
боравенето  с веществото  и първоначалната  обработка  на 
клетките  да се извършват  изцяло  при светлинни  условия , при 
които  да се избегне  фотоактивирането  или разрушаването  на 
изпитваното  вещество  преди  облъчването . 
Изпитваните  вещества  могат  да се разтворят  в буферни  солни  
разтвори , например  балансирания  солен  разтвор  на Ърл (Earl's 
Balanced Salt Solution — EBSS) или други  физиологично  бала­  
нсирани  буферни  разтвори , които  да са свободни  от протеинови  
компоненти , светлинно  поглъщащи  компоненти  (като например  
цветни  pH-индикатори  и витамини ), за да се избегне  
интерференцията  по време  на облъчването . Тъй като по време  
на облъчване  клетките  се държат  около  50 минути  извън  СО 2 
инкубатора , следва  да се вземат  мерки  да се избегне  
алкализирането . Ако се използват  слаби  буфери  като EBSS, 
това може  да се постигне  чрез инкубиране  на клетките  при 
7,5 % СО 2 . Ако клетките  се инкубират  при 5 % СО 2 , следва  
да се избере  по-силен  буфер . 
Изпитваните  химични  вещества  с ограничена  водоразтворимост  
следва  да се разтворят  в подходящ  разтворител . Ако се използва  
разтворител , той следва  да присъства  в постоянен  обем  във 
всички  култури , т.е. в отрицателните  (разтворител ) контроли , 
както  и във всички  концентрации  на изпитваното  вещество , и 
да бъде  нетоксичен  за тази концентрация . Концентрациите  на 
изпитваните  вещества  следва  да се избират  така, че да се 
избягва  образуването  на утайки  или мътни  разтвори . 
За разтворители  се препоръчват  диметилсулфоксид  (DMSO) и 
етанол  (ЕТОН ). Други  разтворители  с ниска  токсичност  също  
могат  да бъдат  подходящи . Преди  употреба  следва  да се 
направи  оценка  на всички  разтворители  по отношение  на 
техните  специфични  свойства , напр . реагиране  с изпитваното  
вещество , потискане  на фототоксичния  ефект , свойства  за 
отстраняване  на примеси  чрез свързването  им с радикали  
и/или химическа  стабилност  в разтворителя . 
Центробежно  смесване  и/или разбъркване  с ултразвук , и/или 
загряване  до подходяща  температура  също  могат  да бъдат  
използвани , за да се подпомогне  разтворимостта , освен  ако 
това не влияе  върху  стабилността  на изпитваното  вещество . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 589
 
1.4.1.5.  Условия  на облъчване  
1.4.1.5.1. С в е т л и н е н и з т о ч н и к 
Изборът  на подходящ  източник  на светлина  и на филтри  е 
решаващ  фактор  при изпитването  за фототоксичност . Свет­  
лината  в UVA диапазона  и видимата  област  обикновено  се 
свързва  с фототоксичните  реакции  in vivo  (3)(12), докато , общо  
взето , UVB е с по-малко  значение , но е високо  цитотоксична ; 
цитотоксичността  се увеличава  1 000-кратно  при промяна  на 
дължината  на вълната  от 313 nm на 280 nm (13). Критериите  
за избор  на подходящ  светлинен  източник  следва  да включват  
изискването  светлинният  източник  да излъчва  в дължини  на 
вълните , които  се поглъщат  от изпитваното  вещество  (спектър  
на абсорбция ), и светлинната  доза (достижима  в приемливо  
време  на излагане ) следва  да бъде  достатъчна  за откриването  
на познати  фототоксични  химични  вещества . Освен  това 
използваните  дължини  на вълните  и дози  следва  да не бъдат  
ненужно  вредни  за системата  на изпитване , напр . излъчване  на 
топлина  (инфрачервен  диапазон ). 
Симулирането  на слънчева  светлина  със слънчеви  симулатори  се 
смята  за оптималния  изкуствен  светлинен  източник . 
Разпределението  на силата  на облъчване  от филтрирания  
слънчев  симулатор  следва  да бъде  близко  до това на излъ­  
чването  на дневна  светлина  на открито , посочено  в (14). Като  
слънчеви  симулатори  се използват  както  ксенонова  дъга, така и 
(подобрени ) живачно -метал  халогенни  дъги  (15). Последните  
имат  предимството  да излъчват  по-малко  топлина  и да са по- 
евтини , но по-малко  наподобяват  слънчевата  светлина , 
отколкото  ксеноновите  дъги . Тъй като всички  слънчеви  
симулатори  излъчват  значителни  количества  UVB, те следва  да 
бъдат  подходящо  филтрирани , за да се намали  присъствието  на 
високотоксичните  UVB дължини . Понеже  пластмасовите  
материали  за клетъчни  култури  съдържат  UV стабилизатори , 
спектърът  следва  да се измерва  през същия  тип капак  на 96- 
гнездната  плочка , който  ще се използва  при изпитването . 
Независимо  от мерките , предприети  за смекчаване  на части  от 
спектъра  чрез филтриране , или от неизбежните  филтърни  ефекти  
на оборудването , спектърът , записан  след  тези филтри , не бива  
да се отклонява  от стандартната  дневна  светлина  (14). Пример  за 
спектралното  разпределение  на облъчването  от филтрирания  
слънчев  симулатор , използвано  при валидиращото  изпитване  
на изпитването  in vitro  3Т3 NRU за фототоксичност , е даден  в 
(8)(16). Вж. също  приложение  2, фигура  1. 
1.4.1.5.2. Д о з и м е т р и я 
Интензитетът  на светлината  (облъчването ) следва  да се 
проверява  редовно  преди  всяко  изпитване  за фототоксичност , 
като се използва  подходящ  широколентов  UV-метър . Интенз­  
итетът  следва  да се измерва  през същия  тип капак  на 96- 
гнездната  плочка , който  ще се използва  при изпитването . UV- 
метърът  следва  да бъде  калибриран  според  източника . Пока­  
зателите  на UV-метъра  следва  да се проверят  и за тази цел се 
препоръчва  използването  на втори  референтен  UV-метър  от 
същия  вид и със същото  калибриране . В идеалния  случай  на 
по-големи  интервали  следва  да се използва  спектрорадиометър  
за измерване  на спектралното  облъчване  от филтрирания  
светлинен  източник  и за проверка  на калибрирането  на 
широколентовия  UV-метър . 
Дозата  от 5 J/cm  2 (както  е измерена  в UVA диапазона ) е 
определена  за нетоксична  за Balb/c 3 Т3 клетки  и за достатъчно  
силна , за да възбуди  химичните  вещества  да предизвикат  
фототоксични  реакции  (6) (17), напр . за да се постигнат  5 
J/cm  2 в период  от време  50 минути , облъчването  е настроено  
на 1,7 mW/cm  2 . Вижте  приложение  2, фигура  2. Ако се използва  
друга  клетъчна  линия  или светлинен  източник , дозата  на 
облъчване  може  да се наложи  да се калибрира , така че да 
може  да се избере  такъв  режим  на дозиране , който  да не е 
вреден  за клетките , но да е достатъчен , за да възбуди  
стандартните  фототоксини . Времето  за излагане  на светлина  се 
изчислява  по следния  начин : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 590
 
tðminÞ ¼ доза на облъчване ðJ= cm  2 Þ Ü 1000 
облъчване ðmW = cm  2 Þ Ü 60 (1 J = 1 Wsec)  
1.4.2.  Условия  на изпитване  
1.4.2.1.  Концентрации  на изпитваните  вещества  
Обхватите  на концентрациите  на веществата , изпитвани  в присъ­  
ствието  (+Irr) или отсъствието  (–Irr) на светлина , следва  да 
бъдат  адекватно  определени  чрез провеждането  на опити  за 
определяне  на обхвата  на дозите . Може  да е полезно  да се 
направи  оценка  на разтворимостта  в началото  и на 60-ата 
минута  (или каквото  време  за третиране  се използва ), тъй 
като разтворимостта  може  да се промени  с течение  на времето  
или по време  на излагането . За да се избегне  токсичност , 
предизвикана  от неправилни  условия  на културата  или от 
високо  киселинни  или алкални  химични  вещества , pH на 
клетъчните  култури  с добавеното  изпитвано  вещество  следва  
да бъде  в обхвата  6,5—7,8.  
Най-високата  концентрация  на изпитваното  вещество  следва  да 
бъде  в границите  на условията  за физиологично  изпитване , напр . 
осмотичният  и pH стресът  следва  да се избегнат . В зависимост  
от изпитваното  вещество  може  да се наложи  да се вземат  под 
внимание  други  физикохимични  свойства  като фактори , 
ограничаващи  най-високата  концентрация  на изпитване . 
Сравнително  неразтворимите  вещества , които  не са токсични  
при концентрации  до точката  на насищане , следва  да се 
изпитат  на най-високата  достижима  концентрация . Като  цяло , 
утаяване  на изпитваното  вещество  при която  и да е от конце­  
нтрациите  на изпитване  следва  да се избягва . Максималната  
концентрация  на изпитваното  вещество  не бива  да превишава  
1000 μg/ml; осмоларността  не следва  да превишава  10 mmolar. 
Следва  да се използва  разреждане  в геометрична  прогресия  на 8 
концентрации  на изпитваното  вещество  с постоянен  коефициент  
(вж. точка  2.1, втори  параграф ). 
Ако съществува  информация  (от експериментите  за определяне  
на обхвата ), че изпитваното  вещество  не е цитотоксично  до 
граничната  концентрация  при опита  на тъмно  (–Irr), но е 
високотоксично , когато  е облъчено  (+Irr), обхватите  на конце­  
нтрации , които  следва  да се изберат  за опита  (+Irr), могат  да се 
различават  от тези, които  се избират  за опита  (–Irr), за да се 
изпълни  изискването  за адекватно  качество  на данните . 
1.4.2.2.  Контроли  
1.4.2.2.1. Ч у в с т в и т е л н о с т н а к л е т к и т е н а о б л ъ ч в а н е , 
у с т а н о в я в а н е н а и с т о р и ч е с к и д а н н и : 
Клетките  следва  да се проверяват  редовно  (приблизително  на 
всяко  пето  преминаване ) за чувствителност  спрямо  светлинния  
източник , като се прави  оценка  на тяхната  жизнеспособност  
след излагането  им на увеличаващи  се дози  облъчване . Няколко  
дози  облъчване , включително  на нива , значително  по-високи  от 
тези, използвани  при изпитването  3Т3 NRU за фоточувствит­  
елност , следва  да се използват  при тази оценка . Тези  дози  се 
измерват  най-лесно  количествено  чрез измерване  на частта  UV 
на светлинния  източник . Клетките  се посяват  при гъстотата , 
използвана  при изпитването  in vitro  3Т3 NRU за фоточувствит­  
елност , и се облъчват  на другия  ден. После , един  ден по-късно , се 
определя  клетъчната  жизненост , като се използва  поглъщането  на 
неутрално  червено . Следва  да се покаже , че получената  най- 
висока  нетоксична  доза (напр . при валидиращото  изследване : 5 
J/cm  2 [UVА]) е била  достатъчна  да се класифицират  правилно  
референтните  вещества  (таблица  1). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 591
 
1.4.2.2.2. Ч у в с т в и т е л н о с т н а о б л ъ ч в а н е , п р о в е р к а н а 
н а с т о я щ о т о и з п и т в а н е : 
Изпитването  отговаря  на критериите  за качество , ако облъчените  
отрицателни /разтворител  контроли  показват  жизнеспособност  
над 80 % в сравнение  с необлъчените . 
1.4.2.2.3. Ж и з н е с п о с о б н о с т н а р а з т в о р и т е л и т е к о н т р о л и : 
Абсолютната  оптична  плътност  (OD  540 NRU  ) на неутралното  
червено , извлечено  от разтворителите  контроли , показва  дали  
1 × 10  4 клетки , посети  на гнездо , са се увеличили  с нормално  
време  на делене  през двата  дни на изпитването . Изпитването  
отговаря  на критериите  за приемане , ако средната  OD  540 NRU  
на нетретираните  контроли  е ≥ 0,4 (т.е. приблизително  
двадесет  пъти  фоновата  абсорбция  от разтворителя ). 
1.4.2.2.4. П о л о ж и т е л н и к о н т р о л и 
Познати  фототоксични  вещества  се изпитват  едновременно  
всеки  с изпитване  in vitro 3Т3 NRU за фототоксичност . 
Препоръчва  се хлорпромазин  (CPZ). За да се изпита  CPZ по 
стандартния  протокол  за изпитване  in vitro  3Т3 NRU за 
фототоксичност , са определени  следните  критерии  за 
приемане : CPZ облъчен  (+Irr): 1 С 50 = 0,1 до 2,0 μg/ml, CPZ 
необлъчен  (-Irr): IC  50 = 7,0 до 90,0 μg/ml. Факторът  на 
фотодразнене  (PIF) следва  да бъде  > 6. Следва  да се наблюдават  
историческите  показатели  на положителната  контрола . 
Други  фототоксични  вещества , подходящи  за химичния  клас 
или характеристиките  на разтворимост  на веществото , на което  
се прави  оценка , могат  също  да бъдат  използвани  като 
паралелни  положителни  контроли  вместо  хлорпромазина . 
1.4.3.  Процедура  на изпитване  (6)(7)(8)(16)(17):  
1.4.3.1.  Първи  ден: 
Отмерете  по 100 μl· хранителна  среда  в периферните  гнезда  на 
96-гнездната  микротитърна  плочка  за тъканни  култури  (= 
празни ). В останалите  гнезда  отмерете  по 100 μl·от клетъчна  
суспензия  от 1 × 10  5 клетки /ml в хранителна  среда  (= 1 × 10  4 
клетки /гнездо ). Следва  да се подготвят  по две плочки  за всяка  от 
сериите  концентрации  на изпитваното  вещество , както  и за 
контролата  разтворител  и положителната  контрола . 
Клетките  се инкубират  в продължение  на 24 часа (вж. точка  
1.4.1.2), докато  образуват  полуслят  монослой . Този  инкуб­  
ационен  период  позволява  възстановяване  на клетките , 
прикрепване  и експоненциален  растеж . 
1.4.3.2.  Втори  ден: 
След  инкубацията  отдекантирайте  хранителната  среда  от 
клетките  и измийте  внимателно  със 150 μl·от буферния  
разтвор , използван  за инкубацията . Добавете  100 μl·от буфера , 
съдържащ  необходимата  концентрация  от изпитваното  вещество  
или разтворител  (разтворител  контрола ). Приложете  8 различни  
концентрации  на изпитваното  вещество . Инкубирайте  клетките  с 
изпитваното  вещество  на тъмно  в продължение  на 60 минути  
(вж. също  точка  1.4.1.2 и точка  1.4.1.4, втори  параграф ). 
От двете  плочки , приготвени  за всяка  серия  от концентрации  на 
изпитваното  вещество  и контролите , изберете  една , обикновено  
случайно , за определяне  на цитотоксичността  (-Irr) ( т.е. 
контролната  плочка ) и една  (третираната  плочка ) — за 
определяне  на фототоксичността  (+Irr).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 592
 
За да направите  +Irr излагане , облъчете  клетките  при стайна  
температура  за период  от 50 минути  през капака  на 96- 
гнездната  плочка  с най-високата  доза облъчване , която  е 
нетоксична  (вж. също  приложение  2). Поставете  необлъчените  
плочки  при стайна  температура  в тъмна  кутия  в продължение  на 
50 минути  (= времето  за излагане  на светлина ). 
Отдекантирайте  изпитвания  разтвор  и внимателно  измийте  два 
пъти  с 150 μl от буферния  разтвор , използван  за инкубация , 
който  обаче  не съдържа  от изпитвания  материал . Сменете  
буфера  с хранителна  среда  и инкубирайте  (виж точка  1.4.1.2) 
до другия  ден (18—22 часа). 
1.4.3.3  Трети  ден: 
1.4.3.3.1 М и к р о с к о п с к а о ц е н к а 
Клетките  трябва  да се изследват  за растеж , морфология  и цялост  
на монослоя  с помощта  на микроскоп  фазов  контраст . Трябва  да 
се водят  бележки  за клетъчната  морфология  и въздействието  
върху  клетъчния  растеж . 
1.4.3.3.2 И з п и т в а н е з а п о г л ъ щ а н е н а Н е у т р а л н о ч е р в е н о 
Измийте  клетките  със 150 μl от предварително  затоплен  буфер . 
Отстранете  измиващия  разтвор  с леко  потупване . Добавете  100 
μl от 50 μg/mL Неутрално  червено  (NR) (3- амин -7-димет­  
иламино -2-метилфеназин  хидрохлорид , номер  EINECS 209-035- 
8; САS номер  553-24-2; С.I. 50040) в среда  без серум  (16) и 
инкубирайте , както  е описано  в параграф  1.4.1.2., в продължение  
на 3 часа. След  инкубацията  отстранете  средата  от NR и 
измийте  клетките  със 150 μl от буфера . Отдекантирайте  и 
отстранете  останалия  буфер  чрез попиване  или центрофугиране . 
Добавете  точно  150 μl дезорбция  за разтвор  на НЧ (прясно  
приготвен  от 49 части  вода  + 50 части  етанол  + 1 част оцетна  
киселина ). 
Разклатете  леко  микротитърната  плочка  на шейкър  за микрот­  
итърни  плочки  за около  10 минути , докато  НЧ не се извлече  от 
клетките  и не образува  хомогенен  разтвор . 
Измерете  оптичната  плътност  на екстракта  НЧ при 540 nm в 
спектрофотометъра , като използвате  празните  места  за 
референтни . Запишете  данните  във формата  на електронен  
файл  за последващ  анализ . 
2. ДАННИ  
2.1. КОЛИЧЕСТВО  И КАЧЕСТВО  НА ДАННИТЕ  
Данните  от изпитването  трябва  да позволяват  значим  анализ  на 
реакцията  на концентрация , получена  при наличието  или 
отсъствието  на облъчване  и ако е възможно , концентрацията  
на изпитваното  вещество , при която  се намалява  клетъчната  
жизнеспособност  до 50 % (IС 50 ). Ако се открие  цитотоксичност , 
трябва  така да се определят  обхватът  на концентрациите  и 
интервала  между  отделните  концентрации , за да може  кривата  
добре  да опише  експерименталните  данни . 
Както  за чисто  положителните , така и за чисто  отрицателните  
резултати  (виж точка  2.3, първия  параграф ), първоначалният  
експеримент , подкрепен  от един  или повече  предварителни  
експеримента  за определяне  на обхвата , може  да бъде  дост­  
атъчен . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 593
 
Двусмислените , гранични  или неясни  резултати  трябва  да се 
изяснят  чрез допълнителни  изпитвания  (виж също  точка  2.4, 
втори  параграф ). В такива  случаи  трябва  да се обмисли  
промяна  на експерименталните  условия . Експериментални  
условия , които  могат  да се променят , включват  обхвата  на 
концентрациите  или интервала , времето  преди  инкубацията  и 
времето  за излагане  на облъчване . За веществата , неустойчиви  
във вода , може  да бъде  подходящо  по-кратко  време  на излагане . 
2.2. ОЦЕНКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
За да могат  резултатите  да се оценят , може  да се изчислят  
фактора  на фотодразнене  (PIF) или средния  фотоефект  (МРЕ ). 
За изчисляване  на мерките  фототоксичност  (виж по-долу ), 
наборът  от дискретни  стойности  на реакция  на концентрация  
трябва  да се опише  от подходяща  крива  на непрекъснати  
стойности  на реакция  на концентрация  (модел ). Налагането  на 
кривата  върху  данните  обикновено  се прави  с помощта  на 
нелинеен  регресивен  метод  (18). За да се оцени  влиянието  на 
променливостта  на данните  върху  описващата  крива , се 
препоръчва  да се използва  процедура  bootstrap.  
Факторът  на фотодразнене  (PIF) се изчислява  по следната  
формула : 
PIF ¼ IC 50 ðÄIrrÞ 
IC 50 ðþIrrÞ 
Ако IC50 в присъствието  или отсъствието  на светлина  не може  
да се изчисли , то PIF не може  да се определи  за изпитвания  
материал . Средният  фотоефект  (МРЕ ) се основава  на 
сравняването  на пълните  криви  на реакция  на концентрация  
(19). Той се определя  като среднотежестна  стойност  на предста­  
вителен  набор  от стойности  на фотоефекта  
MPE ¼ Σ 
i ¼ 1 n 
w i PE c i 
Σ 
i ¼ 1 n 
w i 
Фотоефектът  РЕ С , за която  и да било  концентрация  С, е 
произведението  от ефекта  на реакция  RE  C и ефекта  на дозата  
DE C т.е. РЕ С = RE  C x DE  C . Ефектът  на реакция  RE  C 
представлява  разликата  от реакциите , наблюдавани  в присъ­  
ствието  и отсъствието  на светлина , т.е. RE  C = R  c (-Irr) – R  c 
(+Irr). Ефектът  на дозата  се определя  c: 
DE  c ¼ C=C ä Ä 1 
C=C ä þ 1 Æ Æ Æ Æ Æ Æ Æ Æ 
където  С * представлява  еквивалентната  концентрация , т.е. 
концентрацията , при която  реакцията  при +Irr се изравнява  с 
реакцията  при -Irr при концентрация  С. Ако С * не може  да се 
определи , понеже  стойностите  на реакция  от кривата  +Irr сист­  
ематично  са по-високи  или по-ниски  от Rc(-Irr), ефектът  на 
дозата  се взима  като 1. Тегловните  коефициенти  w i ; предста­  
вляват  най-голямата  стойност  на реакция , т.е. w  i = MAX {R  i 
(+Irr), R  i (-Irr)}. Решетката  на концентрациите  C i се избира  
така, че един  и същи  брой  точки  да попадат  във всеки  един  
от интервалите  на концентрация , получени  от стойностите  на 
концентрацията  в експеримента . Изчисляването  на МРЕ  се 
ограничава  до максималната  стойност  на концентрацията , при 
която  поне  едната  от двете  криви  все още съдържа  стойност  
на реакция  от поне  10 %. Ако тази максимална  концентрация  
е по-висока  от концентрацията , използвана  в експеримента  +Irr, 
остатъчната  част от кривата  +Irr се взима  като стойност  на 
реакцията  „0“. В зависимост  от това дали  стойността  МРЕ  е 
по-голяма  от правилно  избрана  прагова  стойност , (МРЕ  с = 
0,15) или не, химичното  вещество  се класифицира  като 
фототоксично . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 594
 
Съществува  софтуерен  пакет  за изчисляване  на PIF и МРЕ  
от (20).  
2.3. ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Въз основа  на валидиращото  изследване  (8), изпитвано  вещество  
с PIF < 2 или МРЕ  < 0,1 се очаква  да e с: „отсъствие  на 
фототоксичност “. При PIF > 2 и < 5 или МРЕ  > 0,1 и < 0,15 
очаква  да е с: „вероятна  фототоксичност “; а при PIF > 5 или 
МРЕ  > 0,15 се очаква  да е с: „фототоксичност “. 
За всяка  лаборатория , която  за първи  път провежда  това 
изпитване , референтните  материали , изброени  в таблица  1, 
трябва  да бъдат  предварително  изпитани , преди  да се 
предприеме  изпитване  на веществата  на изпитване  за оценка  
на фототоксичността . Стойностите  PIF или МРЕ  трябва  да са 
близки  до тези, споменати  в таблица  1. 
Таблица  1 
Химично  наиме­  
нование  № ЕINECS № САS РIF МРЕ  Абсорбция  
Връх  Разтворител  ( 1 ) 
Амиодарон  
НСL 243-293-2 [19774-82-4] >3,25 0,27—0,54 242 nm 
300 nm 
(рамо ) етанол  
Хлоро­  
промазин  НСL 200-701-3 [69-09-0] >14,4 0,33—0,63 309 nm етанол  
Норфлоксацин  274-614-4 [70458-96-7] >71,6 0,34—0,90 316 nm ацетонитрил  
Антрацен  204-371-1 [120-12-7] >18,5 0,19—0,81 356 nm ацетонитрил  
Прот­  
опорфирин  IX, 
Динатрий  256-815-9 [50865-01-5] >45,3 0,54—0,74 402 nm етанол  
L-Хистидин  [7006-35-1] № РIF 0,05—0,10 211 nm вода  
Хексахлорофен  200-733-8 [70-30-4] 1,1 - 1,7 0,00—0,05 299 nm 
317 nm 
(рамо ) етанол  
Натриев  
лаурил  сулфат  205-788-1 [151-21-3] 1,0 - 1,9 0,00—0,05 няма  
абсорбция  вода  
( 1 ) Разтворител , използван  за измерване  на абсорбцията . 
2.4. ТЪЛКУВАНЕ  НА ДАННИТЕ  
Ако фототоксичните  ефекти  се наблюдават  само  при най- 
високата  концентрация  на изпитване  (особено  при водоразт­  
воримите  изпитвани  вещества ), може  да се наложи  разглеждане  
на допълнителни  фактори  за оценка  на риска . Те могат  да 
включват  данни  за кожната  абсорбция  и акумулирането  на 
веществото  в кожата  и/или данни  от други  изпитвания , напр . 
изпитването  на веществото  in vitro  върху  животинска  или 
човешка  кожа  или върху  модели  на кожа . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 595
 
Ако не се проявява  никаква  токсичност  (+Irr и -Irr) и ако 
малката  разтворимост  е ограничила  концентрациите , които  
могат  да се изпитат , може  да се постави  под съмнение  съвмест­  
имостта  на изпитваното  вещество  с това изпитване  и да трябва  
да се проведе  потвърдително  изпитване , напр . с друг  модел . 
4. ДОКЛАДВАНЕ  
ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  поне  следната  
информация : 
Изпитвано  вещество : 
— идентификационни  данни , приети  генерични  наименования  и 
номер  по ICAS и САS номер , ако са известни ; 
— физическа  природа  и чистота ; 
— физикохимични  свойства  с отношение  към провеждане  
изследването ; 
— абсорбционен  спектър  на UV/vis;  
— стабилност  и фотостабилност , ако са известни . 
Разтворител : 
— обосновка  на избора  на разтворител ; 
— разтворимост  на изпитваното  вещество  в разтворителя ; 
— процентно  съдържание  на разтворителя  в средата  на 
третиране . 
Клетки : 
— тип и източник  на клетките ; 
— липса  на микоплазма ; 
— брой  на преминаващите  клетки , ако е известен ; 
— чувствителност  на клетките  на облъчване , определена  с 
апаратурата  за облъчване , използвана  при изпитването  in 
vitro  ЗТЗ NRUза фототоксичност . 
Условия  на изпитване  (1); инкубиране  преди  и след третиране : 
— тип и състав  на хранителната  среда ; 
— инкубационни  условия  (концентрация  на CO  2 ; температура ; 
влажност ); 
— продължителност  на нкубацията  (предварително  и 
последващо  обработване ). 
Условия  на изпитване  (2); третиране  с веществото : 
— обяснение  за реда  на избор  на концентрациите  на 
изпитваното  вещество  при присъствието  и отсъствието  на 
облъчване ; 
— в случай  на ограничена  разтворимост  на изпитваното  
вещество  и отсъствие  на цитотоксичност : обяснение  на 
реда  за изпитване  на най-висока  концентрация ; 
— тип и състав  на средата  на третиране  (буферен  солен  
разтвор ); 
— продължителност  на химичното  третиране . 
Условия  на изпитване  (3); облъчване : 
— описание  на реда  за избор  на използвания  източник  на 
светлина ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 596
 
— производител  и тип на светлинния  източник  и на радиом­  
етъра ; 
— характеристики  на спектралното  облъчване  от светлинния  
източник ; 
— характеристики  на пропускане  и поглъщане  на използвания  
филтър (ри); 
— характеристики  на радиометъра  и подробности  за 
калибрирането  му; 
— разстояние  между  светлинния  източник  и системата  за 
изпитване ; 
— UVA облъчване  на това разстояние , изразено  в mW/cm  2 ; 
— продължителност  на излагането  на UV/vis светлина ; 
— UVА доза (облъчване  × време ), изразена  в J/cm  2 ; 
— температура  на клетъчните  култури  по време  на облъчване  и 
клетъчните  култури , съхранявани  в това време  на тъмно . 
Условия  на изпитване  (4);  изпитване  за жизнеспособност  с 
Неутрално  червено : 
— състав  на средата  за третиране  с Неутрално  червено ; 
— продължителност  на инкубацията  при Неутрално  червена ; 
— инкубационни  условия  (концентрация  на СО 2 ; температура ; 
влажност ); 
— условия  за екстракция  на Неутрално  червено  (агент  на 
екстракцията , продължителност ); 
— дължина  на вълната , използвана  за спектрометричното  
отчитане  за оптичната  плътност  на Неутралното  червено ; 
— втора  дължина  на вълната  (за сравнение ), ако е използвана ; 
— съдържание  на пробата  използвана  за „празно “ измерване  със 
спектрофотометъра , ако е използвана  такава . 
Резултати : 
— клетъчната  жизнеспособност , получена  при всяка  конце­  
нтрация  на изпитваното  вещество , изразена  в процент  
жизнеспособност  от средната  едновременна  жизнес­  
пособност  на контролите  разтворител ; 
— кривите  на реакция  на концентрация  (химична  концентрация  
на изпитване  спрямо  сравнителна  клетъчна  жизнеспособ­  
ност ), получени  при едновременни  +Irr и -Irr експерименти ; 
— анализ  на кривите  на реакция  на концентрация : ако е 
възможно , изчисляване /пресмятане  на IС 50 (+Irr) и IС 50 (-Irr);  
— сравнение  на двете  криви  на реакция  на концентрация , 
получени  в присъствието  или отсъствието  на облъчване , 
или чрез калкулиране  на фактора  на фото  дразнене  (РIF), 
или чрез изчисляване  на средния  фотоефект  (MPE);  
— критерии  за приемане  на изпитването ; едновременен  контрол  
с разтворител ; 
— абсолютна  жизнеспособност  (оптична  плътност  екстракта  на 
Неутрално  червено ) на облъчените  или необлъчени  клетки ; 
— исторически  отрицателни  данни  и данни  за разтворителя  
контрола ; средни  и стандартни  отклонения ; 
— критерии  за приемане  на изпитването ; едновременен  полож­  
ителен  контрол ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 597
 
— IС 50 (+Irr) и IС 50 (-Irr) и РIFМРЕ  на веществото  положителна  
контрола ; 
— исторически  данни  за веществото  положителна  контрола : 
IС 50 (+Irr) и IС 50 (-Irr) и РIFМРЕ ; средни  и стандартни  
отклонения . 
Обсъждане  на резултатите  на резултатите . 
Заключения . 
4. ПРЕПРАТКИ  
1. Lovell W.W. (1993). A scheme for  in vitro  screening of subs ­
tances for photoallergenic potential. Toxic. In Vitro 7: 95—102.  
2. Santamaria, L. and Prino, G. (1972). List of the photodynamic 
substances. In „Research Progress in Organic, Biological and 
Medicinal Chemistry“ Vol. 3 part 1. North Holland Publishing Co. Amsterdam. p XI—XXXV.
 
3. Spielmann, H., Lovell, W.W., Hölzle, E., Johnson, B.E., 
Maurer, T., Miranda, M.A., Pape, W.J.W., Sapora, O., and 
Sladowski, D. (1994).  In vitro  phototoxicity testing: The 
report and recommendations of ECVAM Workshop 2. ATLA, 22, 314—348.
 
4. Spikes, J.D. (1989). Photosensitization. In „The science of 
Photobiology“ Edited by K.C. Smith. Plenum Press, New York. 2nd edition, p 79—110.
 
5. OECD (1997) Environmental Health and Safety Publications, 
Series on Testing and Assessment No.7 „Guidance Document On Direct Phototransformation Of Chemicals In Water“ Envi ­
ronment Directorate, OECD, Paris.
 
6. Spielmann, H., Balls, M., Döring, B., Holzhütter, H.G., 
Kalweit, S., Klecak, G., L'Eplattenier, H., Liebsch, M., Lovell, W.W., Maurer, T., Moldenhauer. F. Moore. L., Pape, W., Pfannbecker, U., Potthast, J., De Silva, O., Steiling, W., 
and Willshaw, A. (1994). EEC/COLIPA project on  in vitro  
phototoxicity testing: First results obtained with a Balb/c 3T3 cell phototoxicity assay. Toxic. In Vitro 8, 793—796.
 
7. Anon (1998). Statement on the scientific validity of the 3T3 
NRU PT test (an  in vitro  test for phototoxicity), European 
Commission, Joint Research Centre: ECVAM and DGXI/E/2, 3 November 1997, ATLA, 26, 7—8.
 
8. Spielmann, H., Balls, M., Dupuis, J., Pape, W.J.W., Pechovitch, 
G. De Silva, O., Holzhütter, H.G., Clothier, R., Desolle, P., 
Gerberick, F., Liebsch, M., Lovell, W.W., Maurer, T., Pfannen ­
becker, U., Potthast, J. M., Csato, M., Sladowski, D., Steiling, 
W., and Brantom, P. (1998). The international EU/COLIPA  In 
vitro  phototoxicity validation study: results of phase II (blind 
trial), part 1: the 3T3 NRU phototoxicity test. Toxic. In Vitro 12, 305—327.
 
9. OECD (2002) Extended Expert Consultation Meeting on The In 
Vitro 3T3 NRU Phototoxicity Test Guideline Proposal, Berlin, 30th-31th October 2001, Secretariat's Final Summary Report, 15
 th March 2002, OECD ENV/EHS, available upon request 
from the Secretariat.  
10. Borenfreund, E., and Puerner, J.A. (1985). Toxicity determi ­
nation  in vitro  by morphological alterations and neutral red 
absorption. Toxicology Lett., 24, 119—124.  
11. Hay, R.J. (1988) The seed stock concept and quality control for 
cell lines. Analytical Biochemistry 171, 225—237.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 598
 
12. Lambert L.A, Warner W.G., and Kornhauser A. (1996) Animal 
models for phototoxicity testing. In „Dermatotoxicology“, 
edited by F.N. Marzulli and H.I. Maibach. Taylor & Francis, Washington DC. 5th Edition, p 515—530.
 
13. Tyrrell R.M., Pidoux M (1987) Action spectra for human skin 
cells: estimates of the relative cytotoxicity of the middle ultra ­
violet, near ultraviolet and violet regions of sunlight on epidermal keratinocytes. Cancer Res., 47, 1825—1829.
 
14. ISO 10977. (1993). Photography — Processed photographic 
colour films and paper prints — Methods for measuring 
image stability.  
15. Sunscreen Testing (UV.B) TECHNICALREPORT, CIE, Inter ­
national Commission on Illumnation, Publication No. 90, 
Vienna, 1993, ISBN 3 900 734 275  
16. ZEBET/ECVAM/COLIPA — Standard Operating Procedure:  In 
Vitro  3T3 NRU Phototoxicity Test. Final Version, 7 September, 
1998. 18 pgs.  
17. Spielmann, H., Balls, M., Dupuis, J., Pape, W.J.W., De Silva, 
O., Holzhütter, H.G., Gerberick, F., Liebsch, M., Lovell, W.W., and Pfannenbecker, U. (1998) A study on UV filter chemicals 
from Annex VII of the European Union  Directive 76/768/EEC,  
in the  in vitro  3T3 NRU phototoxicity test. ATLA 26, 
679—708.
 
18. Holzhütter, H.G., and Quedenau, J. (1995) Mathematical 
modeling of cellular responses to external signals. J. Biol. 
Systems 3, 127—138.  
19. Holzhütter, H.G. (1997). A general measure of  in vitro  photo­
toxicity derived from pairs of dose-response curves and its use 
for predicting the  in vivo  phototoxicity of chemicals. ATLA, 25, 
445—462.  
20. http://www.oecd.org/document/55/0,2340,en_2649_34377_234 
9687_1_1_1_1,00.html  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 599
 
ПРИЛОЖЕНИЕ  1 
Роля  на изпитването  ЗТЗ NRU за фототоксичност  в последователния  подход  към 
изпитването  за фототоксичност  на веществата
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 600
 
ПРИЛОЖЕНИЕ  2 
Фигура  1 
Спектрално  разпределение  на мощността  на филтриран  слънчев  симулатор
  
(виж секция  1.4.1.5, втори  параграф ) 
Фигура  1 дава пример  за приемливо  спектрално  разпределение  на облъчването  от слънчев  
симулатор  с филтър . Той е от подобрен  метал  халогенен  източник , използван  за 
валидиращото  изпитване  на изпитването  ЗТЗ NRU за фототоксичност  (6)(8)(17). Показани  
са ефектът  от двата  различни  филтъра  и допълнителният  филтриращ  ефект  на капака  на 96- 
гнездната  плочка  за клетъчни  култури . Филтърът  Н2 беше  използван  само  със системи  на 
изпитване , които  могат  да толерират  по-високи  количества  UVB (изпитване  върху  модел  на 
кожа  и изпитване  на червени  кръвни  тела за фото -хемолиза ). При изпитването  ЗТЗ NRU за 
фототоксичност  е използван  филтърът  HI. Фигурата  показва , че допълнителният  филтриращ  
ефект  на капака  на плочката  се наблюдава  главно  в обхвата  UVB, като все пак оставя  дост­  
атъчно  UVB в спектъра  на облъчване , за да възбуди  веществата , които  типично  поглъщат  в 
UVB обхвата  като Амиодарон  (виж таблица  1). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 601
 
Фигура  2 
Чувствителност  на облъчване  на клетките  Balb/c 3T3 ( както  е измерена  в UVA обхвата ) 
Клетъчна  жизнеспособност  ( % поглъщане  на Неутрално  червено  от контроли  на тъмно )
 
(вижте  секция  1.4.1.5.2, втори  параграф ; 1.4.2.2.1, 1.4.2.2.2)  
Чувствителността  на клетките  Balb/c 3T3 на облъчване  със слънчев  симулатор , използван  във 
валидиращото  изпитване  на изпитването  3T3NRU за фототоксичност , както  е измерена  в 
UVA обхвата . Фигурата  показва  резултатите , измерени  в 7 различни  лаборатории  в 
предварителното  валидиращо  изследване  (1). Докато  двете  криви  с незапълнени  символи  са 
получени  от остарели  клетки  (висок  брой  на преминавания ), които  е трябвало  да бъдат  
заменени  с нови  клетки , кривите  с плътни  символи  показват  клетки  с приемлив  толеранс  
на облъчване . 
От тези данни  беше  получена  най-високата  нецитотоксична  доза на облъчване  5 J/cm  2 
(вертикалната  пунктирана  линия ). Хоризонталната  пунктирана  линия  допълнително  показва  
максимално  допустимия  ефект  на облъчване , посочен  в параграф  1.4.2.2.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 602
 
Б.42. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ : ИЗСЛЕДВАНЕ  НА ЛОКАЛНИТЕ  
ЛИМФНИ  ВЪЗЛИ  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Указанията  за изпитването  на химикали  на Организацията  за иконом­  
ическо  сътрудничество  и развитие  (ОИСР ) и основаните  на тях методи  
на ЕС за изпитване  периодично  се преразглеждат  във връзка  с научния  
прогрес , промяната  на регулаторните  нужди  и съображенията , свързани  с 
хуманното  отношение  към животните . Първоначалният  метод  за 
изпитване  (МИ) за определянето  на кожна  сенсибилизация  при мишки  
— Изследването  на локалните  лимфни  възли  (LLNA; Указание  за 
изпитване  429 на ОИСР ; глава  Б.42 от настоящото  приложение ) — беше  
приет  по-рано  (1). Публикувана  е подробна  информация  за валидирането  
на LLNA и е направен  преглед  на съответните  научни  трудове  (2) (3) (4) (5) 
(6) (7) (8) (9) (10) (11). Актуализираното  LLNA се основава  на оценката  на 
опита  и научните  данни  (12). Това  е вторият  МИ, предназначен  за оценка  
на потенциала  на химикалите  (вещества  и смеси ) да предизвикват  кожна  
сенсибилизация  при животни . При другия  МИ (т.е. Указание  за изпитване  
406 на ОИСР ; глава  Б.6 от настоящото  приложение ) се използват  тестове  
върху  морски  свинчета , по-специално  максимизиращ  тест върху  морски  
свинчета  и тест на Buehler (13). LLNA има предимства  в сравнение  с Б.6 и 
Указание  за изпитване  406 на ОИСР  (13) по отношение  на хуманното  
отношение  към животните . Настоящият  актуализиран  метод  за 
изпитване  LLNA включва  набор  от стандарти  за ефективност  (СЕ) 
(допълнение  1), които  могат  да се използват  за оценка  на статуса  на 
валидиране  на нови  и/или модифицирани  методи  за изпитване , които  са 
функционално  и по своя механизъм  сходни  с LLNA, в съответствие  с 
принципите  на Ръководство  № 34 на ОИСР  (14).  
2. При LLNA се проучва  индукционната  фаза  на кожна  сенсибилизация  и 
се получават  количествени  данни , подходящи  за оценяване  на завис­  
имостта  доза—отговор . Следва  да се отбележи , че слабите  — умерени  
сенсибилизатори , които  се препоръчват  като подходящи  положителни  
контролни  химикали  (ПК) при методите  за изследване  върху  морски  
свинчета  (т.е. Б.6 и Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) (13), са 
подходящи  за използване  и при LLNA (6) (8) (15). Подходът  на 
ограничено  изследване  на локалните  лимфни  възли  (rLLNA), при 
който  биха  могли  да се използват  до 40 % по-малко  животни , също  
е описан  като възможност  в настоящия  МИ (16) (17) (18). 
Изследването  rLLNA може  да се използва , когато  е налице  регулаторна  
необходимост  да се потвърди  отрицателна  прогноза  за кожно -сенсиб­  
илизиращ  потенциал , при условие  че се спазват  всички  други  прот­  
околни  спецификации  за LLNA, описани  в настоящия  МИ. Прогнозата  
за отрицателен  резултат  следва  да бъде  направена  въз основа  на цялата  
налична  информация , както  е описано  в точка  4. Преди  прилагането  на 
подхода  rLLNA следва  да се посочат  ясни  основания  и научна  
обосновка  за неговото  използване . Ако въпреки  очакванията  при 
rLLNA се получи  положителен  или неясен  резултат , може  да е необ­  
ходимо  допълнително  изпитване  за тълкуване  или изясняване  на 
резултата . Изследването  rLLNA не трябва  да се използва  за 
определянето  на опасността  от изпитвани  вещества , предизвикващи  
кожна  сенсибилизация , когато  е необходима  информация  за завис­  
имостта  доза—отговор , като например  при подкатегоризация  за 
Регламент  (ЕО) № 1272/2008 относно  класифицирането , етикетирането  
и опаковането  на вещества  и смеси  и Глобалната  хармонизирана  
система  за класифициране  и етикетиране  на химикали  (GHS) на Орга­  
низацията  на обединените  нации  (ООН ). 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
3. Определенията  са дадени  в допълнение  2. 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
4. LLNA осигурява  алтернативен  метод  за определяне  на химикали , които  
са потенциални  кожни  сенсибилизатори . Това  не означава  непременно , 
че при всички  случаи  следва  да се използва  LLNA вместо  тестове  върху  
морски  свинчета , (т.е. глава  Б.6, Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) 
(13), а по-скоро  че изпитването  е равностойно  и може  да бъде  
използвано  като алтернатива , при която  обикновено  положителните  
и отрицателните  резултати  не се нуждаят  от допълнително  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 603
 
потвърждаване . Лабораторията , провеждаща  теста , следва  да вземе  
предвид  цялата  налична  информация  за изпитваното  вещество  преди  
провеждането  на теста . Тази  информация  следва  да включва  идент­  
ичността  и химичната  структура  на изпитваното  вещество ; неговите  
физикохимични  свойства ; резултатите  от всякакви  други  in vitro  или 
in vivo  токсикологични  тестове  на изпитваното  вещество ; и токсик­  
ологични  данни  за структурно  подобни  вещества . Тази  информация  
следва  да се вземе  предвид , за да се определи  дали  LLNA е 
подходящо  за веществото  (с оглед  на неприложимостта  на LLNA по 
отношение  на ограничен  брой  видове  химикали  — вж. точка  5) и 
като помощно  средство  при избора  на доза. 
5. LLNA е in vivo  метод  и вследствие  на това няма  да доведе  до преуста­  
новяване  на използването  на животни  при оценяването  на алергичната  
контактна  сенсибилизираща  активност . При все това този метод  дава 
възможност  да се намали  броят  на животните , изисквани  за тази цел. 
Освен  това LLNA предлага  съществено  подобрение  (изразяващо  се в 
намаление  на болката  и страданието ) на начина , по който  животните  се 
използват  за изпитване  на алергичната  контактна  сенсибилизация . 
LLNA се основава  на отчитането  на имунологичните  ефекти , 
стимулирани  от химикалите  по време  на индукционната  фаза  на 
сенсибилизирането . За разлика  от изследванията  върху  морски  
свинчета  (т.е. глава  Б.6, Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) (13), 
LLNA не изисква  да се разкрие  кожна  свръхчувствителност  след  
предизвикване . Освен  това LLNA не изисква  употребата  на адювант , 
както  в случаите  на максимизиращото  изследване  върху  морски  
свинчета  (13). По такъв  начин  при използване  на LLNA се намаляват  
болката  и страданието  на животните . Въпреки  предимствата  на LLNA 
пред  Б.6 и Указание  за изпитване  406 на ОИСР , следва  да се признае , 
че съществуват  определени  ограничения , които  могат  да доведат  до 
необходимост  от използване  на Б.6 или на Указание  за изпитване  
406 на ОИСР  (13) (напр . фалшиво  отрицателни  резултати  при LLNA 
по отношение  на някои  метали , фалшиво  положителни  резултати  при 
определени  кожни  дразнители ) [например  някои  видове  повърхност­  
ноактивни  химикали ] (19) (20) или разтворимост  на изпитваното  
вещество ). Освен  това химичните  класове  или вещества , съдържащи  
функционални  групи , за които  е доказано  че водят  до възможно  
объркване  (21), могат  да породят  необходимост  от използване  на 
изследванията  върху  морски  свинчета  (т.е. Б.6; Указание  за 
изпитване  406 на ОИСР ) (13). Също  така, въз основа  на ограничената  
валидационна  база данни , която  се състои  предимно  от пестицидни  
препарати , LLNA е по-вероятно  да даде  положителен  резултат  за 
тези видове  изпитвани  вещества  в сравнение  с изследването  върху  
морски  свинчета  (22). При изпитването  на препарати , обаче , следва  
да се обмисли  включването  на подобни  вещества  с известни  
резултати  като еталонни  вещества , за да се докаже  правилното  функц­  
иониране  на LLNA ( вж. точка  16). С изключение  на тези установени  
ограничения , LLNA би следвало  да е приложимо  за изпитване  на 
всички  вещества , освен  ако съществуват  свързани  с тези вещества  
свойства , които  могат  да повлияят  на точността  на LLNA.  
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
6. Основният  принцип , залегнал  в LLNA, е, че сенсибилизаторите  
предизвикват  пролиферация  на лимфоцитите  в лимфните  възли , 
дрениращи  мястото  на прилагане  на изпитваното  вещество . Тази  прол­  
иферация  е пропорционална  на дозата  и на потенциала  на приложения  
алерген  и осигурява  лесен  начин  за получаване  на количествено  
измерване  на сенсибилизацията . Пролиферацията  се измерва  чрез 
сравняване  на средната  пролиферация  във всяка  изпитвана  група  със 
средната  пролиферация  в третираната  само  с носителя  контролна  група  
(КН). Определя  се съотношението  на средната  пролиферация  във всяка  
третирана  група  спрямо  тази в паралелната  третирана  само  с носителя  
контролна  група , наречено  стимулационен  индекс  (SI), който  следва  да 
е ≥ 3, за да може  изпитваното  вещество  да бъде  класифицирано  като 
потенциален  кожен  сенсибилизатор . Описаните  тук процедури  се 
основават  на използването  на радиоактивно  маркиране  in vivo  за 
измерване  на увеличения  брой  на пролифериращите  клетки  в 
дрениращите  аурикуларни  (ушни ) лимфни  възли . От друга  страна  
обаче , за оценка  на броя  на пролифериращите  клетки  могат  да бъдат  
използвани  други  подходи , при условие  че са спазени  напълно  изис­  
кванията  за стандартите  за ефективност  (допълнение  1). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 604
 
ОПИСАНИЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Избор  на животински  вид 
7. Биологичният  вид, избран  за това изследване , е мишката . Използват  се 
млади  възрастни  мишки  от женски  пол от порода  СВА /Са или CBA/J, 
които  не са раждали  и не са бременни . В началото  на изследването  
животните  следва  да бъдат  на възраст  8—12 седмици  и отклоненията  в 
теглото  им следва  да бъдат  минимални  и да не превишават  20 % от 
средното  тегло . Алтернативно  могат  да бъдат  използвани  животни  от 
други  породи  и от мъжки  пол, когато  има достатъчно  събрани  данни , 
които  доказват , че не съществуват  съществени  различия  при реакцията  
при LLNA, обусловени  от пола  и/или породата . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
8. Мишките  следва  да бъдат  групово  отглеждани  (23), освен  ако е дадена  
подходяща  научна  обосновка  за индивидуално  отглеждане  на мишките . 
Температурата  в стаята  на опитните  животни  следва  да бъде  22 ± 3 °C. 
При все че относителната  влажност  следва  да бъде  поне  30 % и е 
препоръчително  тя да не надвишава  70 % освен  по време  на 
почистване  на стаята , целта  е относителната  влажност  да се 
поддържа  в интервала  50—60 %. Осветлението  следва  да бъде  
изкуствено , с последователност  12 часа светлина , 12 часа тъмнина . 
За храненето  могат  да се използват  обичайните  лабораторни  диети  с 
неограничен  достъп  до вода  за пиене . 
Подготовка  на животните  
9. Животните  се избират  произволно , маркират  се, за да е възможно  
индивидуалното  им идентифициране  (но не и чрез маркиране  на 
ушите  им) и се оставят  в клетките  им поне  пет дни преди  започване  
на дозирането , за да се аклиматизират  към лабораторните  условия . 
Всички  животни  се изследват  преди  да започне  третирането , за да се 
потвърди  отсъствието  на видими  кожни  лезии . 
Приготвяне  на разтворите  за дозиране  
10. Твърдите  химикали  следва  да се разтворят  или суспендират  в разт­  
ворители /носители  и ако е необходимо , да се разредят  преди  прил­  
агането  им върху  ушите  на мишките . Течните  химикали  могат  да се 
прилагат  в чист  или разреден  вид преди  дозирането . Неразтворимите  
химикали  като тези, които  обикновено  се наблюдават  в медицинските  
изделия , следва  да се подложат  на засилена  екстракция  в подходящ  
разтворител , за да се проявят  всички  екстрахируеми  съставки  за 
изпитване  преди  прилагането  им върху  ушите  на мишките . 
Изпитваните  вещества  следва  да се приготвят  ежедневно , освен  ако 
данните  за устойчивостта  им показват , че те могат  да се съхраняват . 
Проверка  на надеждността  
11. Използват  се положителни  контролни  химикали  (ПК) за доказване  на 
подходящо  провеждане  на изследването  чрез реагиране  с достатъчна  и 
възпроизводима  чувствителност  като сенсибилизиращо  изпитвано  
вещество , за което  степента  на реакция  е добре  характеризирана . 
Препоръчва  се включването  на паралелна  положителна  контрола  
(ПК), защото  тя доказва  компетентността  на лабораторията  успешно  
да провежда  всяко  изследване  и позволява  оценка  на вътрешно - и 
междулабораторната  възпроизводимост  и сравнимост . Освен  това 
някои  регулаторни  органи  изискват  положителна  контрола  за всяко  
изпитване  и поради  това е препоръчително  ползвателите  на метода  
да се консултират  със съответните  органи  преди  провеждането  на 
LLNA. В съответствие  с това се насърчава  рутинното  използване  на 
паралелна  положителна  контрола , за да се избегне  необходимостта  от 
допълнително  изследване  върху  животни  за спазване  на изисквания , 
които  биха  могли  да възникнат  при използването  на периодична  
положителна  контрола  (вж. точка  12). Положителната  контрола  
следва  да предизвиква  положителна  реакция  при LLNA при ниво  на 
експозиция , при което  се очаква  нарастване  на стимулационния  индекс  
SI > 3 спрямо  отрицателната  контролна  група  (ОК). Дозата  за ПК 
следва  да бъде  избрана  така, че да не причинява  прекомерно  кожно  
дразнене  или системна  токсичност  и индукцията  да е възпроизводима , 
но не прекомерна  (напр . SI > 20 би било  прекомерно ). Предпочитаните  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 605
 
положителни  контроли  са 25 % хексилканелен  алдехид  (№ 101-86-0 
съгласно  химичния  регистър  на Службата  за химични  индекси  — 
Chemical Abstracts Service [CAS]) в ацетон : зехтин  (4:1, об./об.) и 
5 % меркаптобензотиазол  (CAS № 149-30-4) в N,N -диметилформамид  
(вж. допълнение  1, таблица  1). Може  да има обстоятелства , при които  
след  подходяща  обосновка  могат  да бъдат  използвани  и други  полож­  
ителни  контроли , отговарящи  на горепосочените  критерии . 
12. При все че е препоръчително  постоянното  включване  на паралелна  полож­  
ителна  контролна  (ПК) група , могат  да съществуват  ситуации , при които  
прилагането  на периодично  изпитване  (т.е. на интервали  ≤ 6 месеца ) на ПК 
може  да е подходящо  за лаборатории , които  редовно  провеждат  LLNA (т.е. 
провеждат  LLNA не по-малко  от веднъж  месечно ) и имат  създадена  база 
данни  от предишни  изпитвания  с ПК, доказваща  способността  на 
лабораторията  да получава  възпроизводими  и точни  резултати  с положит­  
елните  контроли . Подходящата  компетентност  за провеждане  на LLNA 
може  да бъде  успешно  доказана  чрез получаването  на последователни  
положителни  резултати  с ПК при най-малко  10 независими  изпитвания , 
проведени  в рамките  на разумно  продължителен  период  от време  (т.е. по- 
малко  от една година ). 
13. Винаги  следва  да се включва  паралелна  ПК група , когато  има 
процедурна  промяна  в LLNA ( например  промяна  на обучения  
персонал , промяна  на материалите  и/или реагентите , с които  се 
провежда  методът  за изпитване , промяна  на оборудването , с което  се 
провежда  методът  за изпитване , промяна  в произхода  на опитните  
животни ), като тези промени  следва  да бъдат  документирани  в 
лабораторните  доклади . Следва  да се обърне  внимание  на въздействието  
на тези промени  върху  годността  на предварително  създадената  база 
данни  от предишни  изпитвания  с оглед  да се определи  необходимостта  
от създаване  на нова  база данни  от предишни  изпитвания  за докуме­  
нтиране  на последователността  на резултатите  с ПК. 
14. Изследователите  следва  да са наясно , че решението  за периодично  
провеждане  на изпитване  с положителна  контрола  вместо  паралелното  
му провеждане  има последици  върху  адекватността  и приемливостта  на 
отрицателните  резултати  от изпитването , получени  без паралелна  полож­  
ителна  контрола  по време  на интервала  между  всяко  периодично  
изпитване  с положителна  контрола . Например , ако се получи  погрешен  
отрицателен  резултат  при периодичното  изпитване  с положителна  
контрола , отрицателните  резултати  за изпитваното  вещество , получени  
по време  на интервала  между  последното  приемливо  периодично  
изпитване  с положителна  контрола  и неприемливото  периодично  
изпитване  с положителна  контрола , могат  да бъдат  поставени  под 
съмнение . Изводите  относно  тези резултати  следва  внимателно  да се 
проучат , когато  се взема  решение  дали  да се включват  паралелни  ПК 
или само  да се провеждат  периодични  ПК. Следва  да се проучи  и възмож­  
ността  за използване  на по-малко  животни  в паралелната  ПК група , когато  
това е научно  обосновано  и ако лабораторията  докаже , въз основа  на 
конкретните  за лабораторията  данни  от предишни  изпитвания , че могат  
да бъдат  използвани  по-малко  мишки  (12).  
15. Въпреки  че положителната  контрола  следва  да бъде  изпитвана  с 
носителя , за който  е известно , че при прилагането  му се получава  
постоянна  реакция  (напр . ацетон : зехтин ; 4:1, об./об.), може  да има 
определени  регулаторни  ситуации , при които  да е необходимо  също  
провеждането  на изпитване  с нестандартен  носител  (клинично /химично  
отговаряща  формулация ) (24). Ако паралелната  положителна  контрола  
се изпитва  с различен  носител  от изпитваното  вещество , тогава  следва  
да се включи  отделна  третирана  само  с носителя  контролна  група  за 
паралелната  положителна  контрола . 
16. В случаи , при които  се оценяват  изпитвани  вещества  от определен  
химичен  клас или спектър  от реакции , от полза  могат  да бъдат  и 
еталонните  вещества , за да се докаже , че методът  за изпитване  функц­  
ионира  правилно  по отношение  на откриването  на потенциала  за кожна  
сенсибилизация  на тези видове  изпитвани  вещества . Подходящите  
еталонни  вещества  следва  да притежават  следните  свойства : 
— структурно  и функционално  сходство  с класа  на изпитваното  
вещество ; 
— известни  физични /химични  характеристики ; 
— подкрепящи  данни  от LLNA;  
— подкрепящи  данни  от други  животински  модели  и/или от хора . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 606
 
ПРОЦЕДУРА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Брой  на животните  и нива  на дозите  
17. Използват  се минимум  четири  животни  за подложена  на дадена  доза 
група , при минимум  три концентрации  на изпитваното  вещество , плюс  
паралелна  отрицателна  контролна  група  (ОК), третирана  само  с 
носителя  на изпитваното  вещество , както  и положителна  контрола  
(паралелна  или неотдавнашна  въз основа  на лабораторната  политика  
като се вземат  предвид  точки  11—15). Следва  да се разгледа  възмож­  
ността  за изпитване  на множество  дози  на положителната  контрола , 
особено  когато  не се провеждат  редовни  изпитвания  на ПК. Животните  
от контролните  групи  следва  да бъдат  отглеждани  и третирани  по 
начин , идентичен  с този на животните  от третираните  групи , с 
изключение  на това, че липсва  третиране  с изпитваното  вещество . 
18. Изборът  на доза и носител  следва  да се базира  на препоръките , 
посочени  в литературните  източници  (3) и (5). Последователните  дози  
обикновено  се избират  от подходяща  поредица  от концентрации  като 
например  100 %, 50 %, 25 %, 10 %, 5 %, 2,5 %, 1 %, 0,5 % и т.н. 
Изборът  на използваната  поредица  от концентрации  следва  да бъде  
придружен  от подходяща  научна  обосновка . В случаите  когато  има 
съответна  информация , при избора  на трите  последователни  конце­  
нтрации  следва  да бъде  взета  предвид  цялата  съществуваща  токсик­  
ологична  информация  (напр . остра  токсичност  и кожно  дразнене ) и 
информацията  за структурните  и физикохимичните  свойства  на предста­  
вляващото  интерес  изпитвано  вещество  (и/или структурно  свързаните  
вещества ), така че най-високата  концентрация  да увеличава  в макс­  
имална  степен  експозицията , като същевременно  се избягва  сист­  
ематична  токсичност  и/или прекомерно  локално  кожно  дразнене  (3) 
(25). При липсата  на такава  информация  може  да е необходимо  първон­  
ачално  предварително  скринингово  изпитване  (вж. точки  21—24).  
19. Носителят  не следва  да пречи  или да оказва  влияние  на резултата  от 
изпитването  и следва  да бъде  избран  въз основа  на способността  си 
максимално  да повишава  разтворимостта , за да се получи  най- 
високата  постижима  концентрация , като същевременно  се приготвя  
подходящ  разтвор /суспензия  за прилагане  на изпитваното  вещество . 
Препоръчителните  носители  са ацетон : зехтин  (4:1, об./об.), N,N-димет­  
илформамид , метилетилкетон , пропилен  гликол  и диметилсулфоксид  
(19), но могат  да бъдат  използвани  и други , при условие  че се 
предостави  достатъчна  научна  обосновка . При определени  ситуации  
може  да бъде  необходимо  да се използват  в качеството  на допълнителна  
контрола  клинично  използван  разтворител  или търговски  препарат , в 
състава  на който  изпитваното  вещество  се предлага  на пазара . Следва  
да се положи  специална  грижа  за да се осигури , че хидрофилните  
изпитвани  вещества  се влагат  в среда  от носители , която  навлажнява  
кожата  и не се стича  веднага , чрез инкорпорирането  на подходящи  
солюбилизатори  (напр . 1 % плуроник  — Pluronic® L92). Поради  тази 
причина  трябва  да се избягват  носителите  на изцяло  водна  основа . 
20. Обработката  на лимфни  възли  на отделни  мишки  дава възможност  за 
оценка  на вариабилността  между  животните  и за статистическо  
сравнение  на разликата  между  изпитваното  вещество  и измерванията  в 
третираната  с носителя  контролна  група  (вж. точка  35). В допълнение  
към това е възможно  оценяването  на възможността  за намаляване  на 
броя  на мишките  в ПК група , когато  са събрани  индивидуални  данни  за 
отделните  животни  (12). Освен  това някои  регулаторни  органи  изискват  
събирането  на индивидуални  данни  за отделните  животни . Въпреки  това 
сборните  данни  за животните  могат  да бъдат  счетени  за приемливи  от 
някои  регулаторни  органи  и в такива  случаи  ползвателите  имат  възмож­  
ността  да събират  или индивидуални , или сборни  данни  за животните . 
Предварително  скринингово  изпитване  
21. При липса  на информация  за определянето  на най-високата  доза за 
изпитване  (вж. точка  18) следва  да се извърши  предварително  скринингово  
изпитване , за да се определи  подходящото  ниво  на дозата  за изпитване  при 
LLNA. Целта  на предварителното  скринингово  изпитване  е да осигури  
данни  за избор  на максималното  ниво  на дозата , което  да бъде  използвано  
в основното  изпитване  LLNA в случаите , когато  не е налична  информация  
за концентрацията , причиняваща  системна  токсичност  (вж. точка  24) 
и/или прекомерно  локално  кожно  дразнене  (вж. точка  23). Изпитваното  
максимално  ниво  на дозата  следва  да се състои  от 100 % чисто  изпитвано  
вещество  (за течностите ), или да е с максималната  възможна  концентрация  
(за твърдите  вещества  или суспензиите ). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 607
 
22. Предварителното  скринингово  изпитване  следва  да се провежда  при 
условия , идентични  на тези в основното  изпитване  LLNA, с 
изключение  на това, че не се оценява  пролиферацията  на лимфните  
възли  и могат  да се използват  по-малко  животни  за подложена  на 
определена  доза група . Предлага  се използването  на едно  или две 
животни  за подложена  на определена  доза група . Всички  мишки  се 
наблюдават  ежедневно  за всякакви  клинични  признаци  за системна  
токсичност  или локално  дразнене  на мястото  на прилагане . 
Телесните  тегла  се записват  преди  изпитването  и преди  завършването  
му (ден 6). И двете  уши на всяка  мишка  се наблюдават  за еритема  и 
резултатите  се отчитат , като се използва  таблица  1 (25). Измерванията  
на дебелината  на ушите  се правят , като се използва  измервателен  уред  
за дебелина  (напр . цифров  микрометър  или измервателен  уред  за 
дебелина  Peacock Dial) в ден 1 (преди  дозирането ), ден 3 (приблиз­  
ително  48 часа след  първата  доза) и ден 6. Освен  това дебелината  на 
ушите  в ден 6 може  да се определи  чрез продупчване  на ушите  и 
определяне  на теглото  на взетите  продупчени  части , което  следва  да 
се извърши  след  като животните  бъдат  умъртвени  по хуманен  начин . 
Показател  за прекомерното  локално  кожно  дразнене  е балова  оценка  на 
еритемата  ≥ 3 и/или увеличаване  на дебелината  на ушите  в размер  на 
≥ 25 % в който  и да било  от дните  с измервания  (26) (27). Най- 
високата  доза, избрана  за основното  изпитване  LLNA, ще бъде  
следващата  по-ниска  доза от поредицата  от концентрации  в предварит­  
елното  скринингово  изпитване  (вж. точка  18), която  не причинява  
системна  токсичност  и/или прекомерно  локално  кожно  дразнене . 
Таблица  1 
Оценки  на еритемата  
Наблюдение  Балова  оценка  
Отсъствие  на еритема  0 
Много  слаба  еритема  (едва забележима ) 1 
Добре  изразена  еритема  2 
Умерена  до тежка  еритема  3 
Тежка  еритема  (силно  зачервяване  — с цвят  на цвекло ) до 
образуване  на есхара , което  не позволява  да се отчете  
баловата  оценка  на еритемата  4 
23. В допълнение  към увеличаването  на дебелината  на ушите  с 25 % (26) 
(27), за идентифициране  на дразнители  при LLNA също  така се 
използва  статистически  значимо  увеличаване  на дебелината  на ушите  
при третираните  мишки  в сравнение  с контролните  мишки  (28) (29) 
(30) (31) (32) (33) (34). Въпреки  това, макар  че могат  да възникнат  
статистически  значими  увеличения , когато  дебелината  на ушите  е по- 
малка  от 25 %, те не са конкретно  свързани  с прекомерното  дразнене  
(30) (32) (33) (34).  
24. Следните  клинични  наблюдения  могат  да покажат  наличие  на системна  
токсичност  (35) (36), когато  се използват  като част от интегрална  
оценка , и поради  това могат  да посочат  какво  следва  да е максим­  
алното  ниво  на дозата , което  да се използва  в основното  LLNA 
изпитване : промени  във функционирането  на нервната  система  (напр . 
пилоерекция , атаксия , тремори  и конвулсии ); промени  в поведението  
(напр . агресивност , промяна  в хигиената  на тялото , изразена  промяна  в 
нивото  на активност ); промени  в начина  на дишане  (т.е. промени  в 
честотата  и интензивността  на дишането  като диспнея , задъханост  и 
хрипове ) и промени  в консумацията  на храна  и вода . Освен  това в 
оценката  следва  да бъдат  взети  предвид  признаци  на летаргия  и/или 
липса  на реакция  и всякакви  клинични  признаци  на нещо  повече  от 
лека или момента  болка  и страдание  или намаляване  на телесното  
тегло  > 5 % от ден 1 до ден 6, както  и смъртността . Умиращите  
животни , както  и животните , които  очевидно  изпитват  болка  или 
показват  признаци  на тежко  и продължително  страдание , следва  да 
бъдат  умъртвени  по хуманен  начин  (37).  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 608
 
Експериментален  график  на основното  изпитване  
25. Експерименталният  график  на изпитването  е, както  следва : 
— Ден 1: Индивидуално  се идентифицира  и записва  теглото  на всяко  
животно  и всяко  клинично  наблюдение . Прилага  се 25 μL 
подходящо  разреден  разтвор  на изпитваното  вещество , както  и 
самостоятелно  носителят  или положителната  контрола  (паралелна  
или неотдавнашна  въз основа  на лабораторната  политика , като се 
вземат  предвид  точки  11—15), в горната  част на всяко  ухо. 
— Дни 2 и 3: Повтаря  се процедурата  по прилагане , извършена  в 
ден 1. 
— Дни 4 и 5: Няма  третиране . 
— Ден 6: Записва  се теглото  на всяко  животно . Инжектира  се 250 μL 
стерилен  буферен  физиологичен  разтвор  с фосфат  (PBS), съдържащ  
20 μСi (7,4 × 10  5 Bq) тритиев  ( 3 H)-метил  тимидин  на всички  
изследвани  и контролни  мишки  през опашната  вена . Алтернативно  
се инжектира  250 μL стерилен  PBS, съдържащ  2 μСi (7,4 × 10  4 Bq)  
125 I-йододеоксиуридин  и 10  –5 Μ флуородеоксиуридин  на всички  
мишки  през опашната  вена . Пет часа (5 h) по-късно  животните  
се умъртвяват  по хуманен  начин . Дрениращите  аурикуларни  
(ушни ) лимфни  възли  от всяко  ухо на мишката  се отрязват  и се 
обработват  заедно  в PBS за всяко  животно  (индивидуален  подход  
към животните ); алтернативно  лимфните  възли  от всяко  ухо се 
отрязват  и събират  в PBS за всяка  третирана  група  (общ подход  
за третиране  на групата ). Подробности  и диаграми  за идент­  
ифицирането  и дисекцията  на лимфните  възлите  могат  да бъдат  
намерени  в позоваване  (12). За допълнително  наблюдение  на 
локалната  кожна  реакция  при основното  изпитване  в протокола  
от изпитването  могат  да бъдат  включени  допълнителни  
параметри  като оценяване  на ушната  еритема  или измервания  на 
дебелината  на ушите  (получени  или чрез използването  на 
измервателен  уред  за дебелината , или чрез продупчване  на ушите  
и определяне  на теглото  на взетите  продупчени  части  при 
аутопсията ). 
Приготвяне  на клетъчни  суспензии  
26. Клетъчна  суспензия  от единични  клетки  се приготвя  от клетки  от 
лимфните  възли  (КЛВ ), отрязани  двустранно , като се използва  
индивидуалният  подход  към животните  или алтернативно  общият  
подход  за третиране  на групата , чрез леко  механично  раздробяване  
през 200-микронови  отвори  на мрежа  от неръждаема  стомана  или 
чрез друга  приемлива  техника  за получаване  на клетъчна  суспензия  
от единични  клетки . Клетките  от лимфните  възли  се измиват  
двукратно  с голямо  количество  PBS и ДНК -то се преципитира  с 5 % 
трихлороцетна  киселина  (ТСА ) при 4 °C в продължение  на 18 часа (3). 
Малките  сферични  топчета  или повторно  се суспендират  в 1 ml ТСА  и 
се прехвърлят  в сцинтилационни  стъкленици , съдържащи  10 mL сцинт­  
илационна  течност  за 3 H-преброяване , или се прехвърлят  директно  в 
гама  броителни  епруветки  за 125 I-преброяване . 
Определяне  на клетъчната  пролиферация  (инкорпорирана  радио­  
активност ) 
27. Инкорпорирането  на 3 H-метил  тимидин  се измерва  чрез β-сцинт­  
илационен  брояч  като разпадане  (дезинтегриране ) за минута  (DPM). 
Инкорпорирането  на 125 I-йододеоксиуридин  се измерва  чрез  125 I- 
брояч  и също  се изразява  като DPM. В зависимост  от използвания  
подход  инкорпорирането  се изразява  като DPM/мишка  (индивидуален  
подход  към животните ) или DPM/третирана  група  (общ подход  за 
третиране  на групата ). 
Ограничено  LLNA  
28. В определени  случаи , когато  е налице  регулаторна  необходимост  да се 
потвърди  отрицателна  прогноза  за потенциален  кожен  сенсибилизатор , 
може  да се използва  незадължителен  протокол  за rLLNA (16) (17) (18), 
при който  се използват  по-малко  животни , при условие  че се спазват  
всички  други  протоколни  спецификации  за LLNA, описани  в 
настоящия  МИ. Преди  прилагането  на подхода  rLLNA следва  да се 
предоставят  ясни  основания  и научна  обосновка  за неговото  
използване . Ако се получи  положителен  или неясен  резултат , може  
да е необходимо  допълнително  изпитване  за тълкуване  или изясняване  
на резултата . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 609
 
29. Намаляването  на броя  подложени  на различни  дози  групи  е 
единствената  разлика  между  протоколите  за методите  на изпитване  
LLNA и rLLNA и поради  тази причина  rLLNA не предоставя  
информация  за зависимостта  доза—реакция . Следователно  rLLNA не 
трябва  да се използва , когато  е необходима  информация  за завис­  
имостта  доза—реакция . Както  при използващото  множество  дози  
LLNA, концентрацията  на изпитваното  вещество , оценявана  при 
rLLNA, следва  да бъде  максималната  концентрация , която  не 
причинява  явна  систематична  токсичност  и/или прекомерно  локално  
кожно  дразнене  на мишката  (вж. точка  18).  
НАБЛЮДЕНИЯ  
Клинични  наблюдения  
30. Всяка  мишка  следва  да бъде  внимателно  наблюдавана  поне  веднъж  
дневно  за всякакви  клинични  признаци  за локално  дразнене  на 
мястото  на прилагане  или за систематична  токсичност . Всички  набл­  
юдения  следва  систематично  да се записват , като се водят  дневници  за 
всяка  мишка . Плановете  за наблюдение  следва  да включват  критерии  
за бързото  идентифициране  на мишките , които  показват  признаци  на 
систематична  токсичност , прекомерно  локално  кожно  дразнене  или 
корозивност  на кожата , за да бъдат  подложени  на евтаназия  (37).  
Телесни  тегла  
31. Както  е посочено  в точка  25, индивидуалните  телесни  тегла  на 
животните  следва  да бъдат  измерени  в началото  на изпитването  и 
при планираното  умъртвяване  на животните  по хуманен  начин . 
ИЗЧИСЛЯВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
32. Резултатите  за всяка  третирана  група  се изразяват  чрез стимулац­  
ионния  индекс  (SI). Когато  се използва  индивидуалният  подход  към 
животните , SI се получава  чрез разделяне  на средната  стойност  на 
DPM/мишка  във всяка  група , изследвана  с изпитваното  вещество , 
както  и в положителната  контролна  група , на средната  стойност  на 
DPM/мишка  за контролната  група , третирана  само  с разтворителя /нос­  
ителя . Средната  стойност  на SI за контролите , третирани  само  с 
носителя , е единица . Когато  се използва  общият  подход  за третиране  
на групата , SI се получава  чрез разделяне  на общото  радиоактивно  
инкорпориране  за всяка  третирана  група  на инкорпорирането  на 
общата  третирана  само  с носителя  контролна  група ; така се получава  
средният  SI. 
33. При процеса  на вземане  на решение , даден  резултат  се счита  за полож­  
ителен , когато  SI ≥ 3. При гранични  резултати , обаче , могат  да бъдат  
взети  предвид  и силата  на зависимостта  доза—отговор , статист­  
ическата  значимост  и съответствието  на реакциите  при третиране  с 
разтворител /носител  и ПК реакциите  (4) (5) (6).  
34. Ако е необходимо  изясняване  на получените  резултати , следва  да се 
обърне  внимание  на различните  свойства  на изпитваното  вещество , 
включително  дали  то има структурна  връзка  с познати  кожни  сенсиб­  
илизатори , дали  причинява  прекомерно  кожно  дразнене  при мишките , 
както  и на естеството  на наблюдаваната  зависимост  доза—отговор . 
Тези  и други  съображения  подробно  се обсъждат  на друго  място  (7). 
35. Събирането  на данни  за радиоактивността  на нивото  на отделните  
мишки  дава възможност  за статистически  анализ  на наличието  и 
степента  на зависимостта  доза—отговор  в данните . Всяка  статист­  
ическа  оценка  би могла  да включва  оценка  на зависимостта  доза—от­ 
говор , както  и подходящо  направени  сравнения  между  изпитваните  
групи  (напр . сравнения  по двойки  на третираните  с определени  дози  
групи  съответно  с паралелната  третирана  с носител  контролна  група ). 
Статистическите  анализи  могат  например  да включват  линейна  
регресия  или изпитването  на William за оценка  на тенденциите  в завис­  
имостта  доза—отговор  и изпитването  на Dunnett за сравнения  по 
двойки . При избора  на подходящ  метод  за статистически  анализ  изсле­  
дователят  следва  да обърне  внимание  на възможни  различия  в 
дисперсиите  и други  свързани  с тях проблеми , които  могат  да 
наложат  трансформация  на данните  или провеждане  на статистически  
анализ  без параметри . Във всеки  случай  на изследователя  може  да му 
се наложи  да извърши  изчисления  за SI и статистически  анализи  със и 
без определени  точки  с данни  (понякога  наричани  „отклоняващи  се 
стойности “). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 610
 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
36. Данните  следва  да бъдат  обобщени  в табличен  вид. Когато  се използва  
индивидуалният  подход  към животните , се посочват  индивидуалните  
DPM стойности  за отделните  животни , средната  за групата  стойност  
DPM/животно , съответните  граници  на отклонения  (напр . SD, SEM) и 
средният  SI за всяка  подложена  на дадена  доза група  в сравнение  с 
паралелната  третирана  с носителя  контролна  група . Когато  се използва  
общият  подход  за третиране  на групата , се посочва  средната / 
междинната  DPM стойност  и средният  SI за всяка  подложена  на 
дадена  доза група  в сравнение  с паралелната  третирана  с носителя  
контролна  група . 
Протокол  от изпитването  
37. Протоколът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитвани  и контролни  вещества : 
— идентификационни  данни  (напр . CAS и EC номера , ако са налични ; 
източник , чистота , известни  примеси , номер  на партидата ); 
— физична  форма  и физикохимични  свойства  (напр . летливост , усто­  
йчивост , разтворимост ); 
— ако е смес , състав  и относително  съотношение  в проценти  на 
елементите . 
Разтворител /носител : 
— идентификационни  данни  (чистота ; концентрация , където  е 
подходящо ; използвано  количество ); 
— обосновка  за избора  на носител . 
Опитни  животни : 
— произход  на мишките  от порода  CBA;  
— микробиологичен  статус  на животните , ако е известен ; 
— брой  и възраст  на животните ; 
— произход  на животните , условия  на отглеждане , диета  и т.н. 
Условия  на изпитване : 
— подробна  информация  за приготвянето  и прилагането  на 
изпитваното  вещество ; 
— обосновка  за избора  на доза (включително  резултатите  от 
предварителното  скринингово  изпитване , ако е проведено ); 
— използвани  концентрации  на изпитваното  вещество  и носителя  и 
общо  количество  на приложеното  изпитвано  вещество ; 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  вид/източник  на диетата , водоизточник ); 
— подробна  информация  за графиците  на третиране  и вземане  на 
проби ; 
— методи  за измерване  на токсичността ; 
— критерии  за считане  на изпитванията  за положителни  или отриц­  
ателни ; 
— подробна  информация  за всякакви  отклонения  от протокола  и 
обяснение  за това как отклонението  влияе  на планирането  на 
изпитването  и на резултатите  от него . 
Проверка  на надеждността : 
— обобщение  на резултатите  от последната  проверка  на 
надеждността , включително  информация  за използваните  
изпитвано  вещество , концентрация  и носител ; 
— данни  за паралелни  и/или предишни  положителни  контроли  и 
паралелни  отрицателни  контроли  в лабораторията , провеждаща  
изпитването ; ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 611
 
— ако не е била  включена  паралелна  положителна  контрола , посочва  
се датата  и лабораторният  доклад  на най-скорошното  периодично  
изпитване  с положителна  контрола  и доклад , в който  подробно  се 
представят  данните  от предишни  изпитвания  с положителни  
контроли  на лабораторията , обосноваващ  защо  не се провежда  
паралелна  положителна  контрола . 
Резултати : 
— индивидуални  тегла  на мишките  в началото  на дозирането  и при 
планираното  им умъртвяване ; както  и средната  стойност  и 
границата  на отклонение  (напр . SD, SEM) за всяка  третирана  група ; 
— признаци  на токсичност  и време  на настъпването  им, включително  
кожно  дразнене  на мястото  на прилагане , ако има такова , за всяко  
животно ; 
— таблица  на DPM стойностите  и стойностите  на SI за всяка  мишка  
(индивидуален  подход  към животните ) или средните /медианните  
стойности  (общ подход  за третиране  на групата ) DPM стойности  
и стойности  на SI за всяка  третирана  група ; 
— средната  стойност  и съответната  граница  на отклонение  (напр . SD, 
SEM) за DPM/мишка  за всяка  третирана  група  и резултатите  от 
анализа  на отклоняващите  се стойности  за всяка  третирана  група , 
когато  се използва  индивидуалният  подход  към животните ; 
— изчисленият  SI и подходяща  мярка  за вариабилността , при която  се 
отчита  вариабилността  между  животните  както  в групата  с 
изпитваното  вещество , така и в контролната  група , когато  се 
използва  индивидуалният  подход  към животните ; 
— зависимостта  доза—отговор ; 
— статистически  анализи , където  е подходящо . 
Обсъждане  на резултатите : 
— кратък  коментар  на резултатите , анализ  на зависимостта  
доза—отговор  и статистически  анализ , където  е подходящо , със 
заключение  дали  изпитваното  вещество  следва  да се счита  за 
кожен  сенсибилизатор . 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD (2002), Skin Sensitisation: Local Lymph Node Assay. OECD 
Guideline for the Testing of Chemicals № 429, Paris. На разположение  
на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(2) Kimber, I. and Basketter, D.A. (1992), The murine local lymph node assay; 
collaborative studies and new directions: A commentary,  Food Chem. 
Toxicol ., 30, 165-169.  
(3) Kimber, I., Dearman, R.J., Scholes, E.W. and Basketter, D.A. (1994), The 
local lymph node assay: developments and applications,  Toxicol ., 93, 13-31.  
(4) Kimber, I., Hilton, J., Dearman, R.J., Gerberick, G.F., Ryan, C.A., 
Basketter, D.A., Lea, L., House, R.V., Ladies, G.S., Loveless, S.E. and Hastings, K.L. (1998), Assessment of the skin sensitisation potential of 
topical medicaments using the local lymph node assay: An interlaboratory 
exercise,  J. Toxicol. Environ. Health , 53, 563-79.
 
(5) Chamberlain, M. and Basketter, D.A. (1996), The local lymph node assay: 
status of validation,  Food Chem. Toxicol ., 34, 999-1002.  
(6) Basketter, D.A., Gerberick, G.F., Kimber, I. and Loveless, S.E. (1996), The 
local lymph node assay: A viable alternative to currently accepted skin sensitisation tests,  Food Chem. Toxicol ., 34, 985-997.
 
(7) Basketter, D.A., Gerberick, G.F. and Kimber, I. (1998), Strategies for iden ­
tifying false positive responses in predictive sensitisation tests,  Food Chem. 
Toxicol ., 36, 327-33.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 612
 
(8) Van Och, F.M.M., Slob, W., De Jong, W.H., Vandebriel, R.J. and Van 
Loveren, H. (2000), A quantitative method for assessing the sensitising 
potency of low molecular weight chemicals using a local lymph node assay: employment of a regression method that includes determination of uncertainty margins,  Toxicol ., 146, 49-59.
 
(9) Dean, J.H., Twerdok, L.E., Tice, R.R., Sailstad, D.M., Hattan, D.G., Stokes, 
W.S. (2001), ICCVAM evaluation of the murine local lymph node assay: II. 
Conclusions and recommendations of an independent scientific peer review panel,  Reg. Toxicol. Pharmacol , 34: 258-273.
 
(10) Haneke, K.E., Tice, R.R., Carson, B.L., Margolin, B.H., Stokes, W.S. 
(2001), ICCVAM evaluation of the murine local lymph node assay: III. 
Data analyses completed by the national toxicology program interagency center for the evaluation of alternative toxicological methods,  Reg. Toxicol. 
Pharmacol , 34, 274-286.
 
(11) Sailstad, D.M., Hattan, D., Hill, R.N., Stokes, W.S. (2001), ICCVAM 
evaluation of the murine local lymph node assay: I. The ICCVAM review process,  Reg. Toxicol. Pharmacol , 34: 249-257.
 
(12) ICCVAM (2009), Recommended Performance Standards: Murine Local 
Lymph Node Assay, NIH Publication Number 09-7357, Research 
Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/docs/immuno ­
tox_docs/llna-ps/LLNAPerfStds.pdf]
 
(13) OECD (1992),  Skin Sensitisation . OECD Guideline for Testing of Chemicals 
№ 406, OECD, Paris. На разположение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/ 
testguidelines]  
(14) OECD (2005),  Guidance Document on the Validation and International 
Acceptance of New or Updated Test Methods for Hazard Assessment , Envi­
ronment, Health and Safety Monograph, Series on Testing and Assessment 
№ 34, ENV/JM/MONO(2005)14, OECD, Paris. На разположение  на 
адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(15) Dearman, R.J., Hilton, J., Evans, P., Harvey, P., Basketter, D.A. and 
Kimber, I. (1998), Temporal stability of local lymph node assay 
responses to hexyl cinnamic aldehyde,  J. Appl. Toxicol ., 18, 281-284.  
(16) Kimber, I., Dearman, R.J., Betts, C.J., Gerberick, G.F., Ryan, C.A., Kern, 
P.S., Patlewicz, G.Y. and Basketter, D.A. (2006), The local lymph node 
assay and skin sensitisation: a cut-down screen to reduce animal require ­
ments?  Contact Dermatitis , 54, 181-185.  
(17) ESAC (2007), Statement on the Reduced Local Lymph Node Assay (rLLNA), 
European Commission Directorate General, Joint Research Centre, Institute for 
Health and Consumer Protection, European Centre for the Validation of Alter ­
native Methods, April 2007. На разположение  на адрес : [http://ecvam.jrc.it/ 
ft_doc/ESAC26_statement_rLLNA_20070525-1.pdf]  
(18) ICCVAM (2009), The Interagency Coordinating Committee on the Vali ­
dation of Alternative Methods (ICCVAM) Test Method Evaluation Report. 
The Reduced Murine Local Lymph Node Assay: An Alternative Test 
Method Using Fewer Animals to Assess the Allergic Contact Dermatitis Potential of Chemicals and Products, NIH Publication Number 09-6439, Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health 
Sciences. На разположение  на адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/]
 
(19) ICCVAM (1999), The Murine Local Lymph Node Assay: A Test Method for 
Assessing the Allergic Contact Dermatitis Potential of Chemicals/Compounds, The Results of an Independent Peer Review Evaluation Coordinated by the 
Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative 
Methods (ICCVAM) and the National Toxicology Program Interagency Center for the Evaluation of Alternative Toxicological Methods (NICEATM), NIH Publication № 99-4494, Research Triangle Park, NC: National Institute of 
Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : [http://iccvam. 
niehs.nih.gov/docs/immunotox_docs/llna/llnarep.pdf]
 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 613
 
(20) Kreiling, R., Hollnagel, H.M., Hareng, L., Eigler, L., Lee, M.S., Griem, P., 
Dreessen, B., Kleber, M., Albrecht, A., Garcia, C. and Wendel, A. (2008), 
Comparison of the skin sensitising potential of unsaturated compounds as assessed by the murine local lymph node assay (LLNA) and the guinea pig maximization test (GPMT), Food Chem. Toxicol., 46, 1896-1904.
 
(21) Basketter, D., Ball, N., Cagen, S., Carrilo, J.C., Certa, H., Eigler, D., 
Garcia, C., Esch, H., Graham, C., Haux, C., Kreiling, R. and Mehling, A. (2009), Application of a weight of evidence approach to assessing 
discordant sensitisation datasets: implications for REACH, Reg. Toxicol. 
Pharmacol., 55, 90-96.
 
(22) ICCVAM (2009), ICCVAM Test Method Evaluation Report. Assessment of 
the Validity of the LLNA for Testing Pesticide Formulations and Other 
Products, Metals, and Substances in Aqueous Solutions, NIH Publication Number 10-7512, Research Triangle Park, NC: National Institute of Envi ­
ronmental Health Sciences, на разположение  на адрес : [http://iccvam.ni ­
ehs.nih.gov/]
 
(23) ILAR (1996), Institute of Laboratory Animal Research (ILAR) Guide for 
the Care and Use of Laboratory Animals, 7th ed. Washington, DC: National 
Academies Press.  
(24) McGarry, H.F. (2007), The murine local lymph node assay: regulatory and 
potency considerations under REACH, Toxicol., 238, 71-89.  
(25) OECD (2002), Acute Dermal Irritation/Corrosion. OECD Guideline for 
Testing of Chemicals № 404, Paris, France. На разположение  на адрес : 
[http://www.oecd.org/document/40/0,3343,en_2649_34377_37051368_1_1_1 
_1,00.html]  
(26) Reeder, M.K., Broomhead, Y.L., DiDonato, L. and DeGeorge, G.L. (2007), 
Use of an enhanced local lymph node assay to correctly classify irritants 
and false positive substances, Toxicologist, 96, 235.  
(27) ICCVAM (2009), Non-radioactive Murine Local Lymph Node Assay: Flow 
Cytometry Test Method Protocol (LLNA: BrdU-FC) Revised Draft Background Review Document, Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/immunotox/fcLLNA/BRDcomple ­
te.pdf]
 
(28) Hayes, B.B., Gerber, P.C., Griffey, S.S. and Meade, B.J. (1998), Contact 
hypersensitivity to dicyclohexylcarbodiimide and diisopropylcarbodiimide 
in female B6C3F1 mice, Drug. Chem. Toxicol., 21, 195-206.  
(29) Homey, B., von Schilling, C., Blumel, J., Schuppe, H.C., Ruzicka, T., Ahr, 
H.J., Lehmann, P. and Vohr, V.W. (1998), An integrated model for the 
differentiation of chemical-induced allergic and irritant skin reactions,  
Toxicol. Appl. Pharmacol ., 153, 83-94.  
(30) Woolhiser, M.R., Hayes, B.B. and Meade, B.J. (1998), A combined murine 
local lymph node and irritancy assay to predict sensitisation and irritancy potential of chemicals,  Toxicol. Meth ., 8, 245-256.
 
(31) Hayes, B.B. and Meade, B.J. (1999), Contact sensitivity to selected acrylate 
compounds in B6C3F1 mice: relative potency, cross reactivity, and comparison of test methods,  Drug. Chem. Toxicol ., 22, 491-506.
 
(32) Ehling, G., Hecht, M., Heusener, A., Huesler, J., Gamer, A.O., van 
Loveren, H., Maurer, T., Riecke, K., Ullmann, L., Ulrich, P., Vandebriel, R. and Vohr, H.W. (2005), A European inter-laboratory validation of alter ­
native endpoints of the murine local lymph node assay: first round.  Toxicol ., 
212, 60-68.
 
(33) Vohr, H.W. and Ahr, H.J. (2005), The local lymph node assay being too 
sensitive?  Arch. Toxicol ., 79, 721-728.  
(34) Patterson, R.M., Noga, E. and Germolec, D. (2007), Lack of evidence for 
contact sensitisation by Pfiesteria extract,  Environ. Health Perspect ., 115, 
1023-1028.  
(35) OECD (1987),  Acute Dermal Toxicity , OECD Guideline for Testing of 
Chemicals № 402, Paris, France. На разположение  на адрес : 
[http://www.oecd.org/env/testguidelines]  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 614
 
(36) ICCVAM (2009), Report on the ICCVAM-NICEATM/ECVAM/JaCVAM 
Scientific Workshop on Acute Chemical Safety Testing: Advancing In Vitro 
Approaches and Humane Endpoints for Systemic Toxicity Evaluations. Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences, на разположение  на адрес : http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ 
acutetox/Tox_workshop.htm]
 
(37) OECD (2000),  Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation , Environmental Health and Safety Monograph, 
Series on Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, 
Paris. На разположение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]
 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 615
 
Допълнение  1 
Стандарти  за ефективност , предназначени  за оценка  на предложени  
сходни  или модифицирани  методи  за изпитване  LLNA за кожна  
сенсибилизация  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Предназначението  на стандартите  за ефективност  (СЕ) е да се обявят  
основанията , въз основа  на които  новите  методи  за изпитване , както  
патентованите  (т.е. защитените  от авторско  право , официално  
регистрираните  с търговска  марка , регистрираните ), така и непатент­  
ованите , могат  да бъдат  определени  като достатъчно  точни  и 
надеждни  за целите  на конкретни  изпитвания . Тези  СЕ, основани  на 
валидирани  и приети  методи  за изпитване , могат  да бъдат  използвани  
за оценяване  на надеждността  и точността  на други  сходни  методи  
(разговорно  наричани  „вариантни  методи “ за тестовете  — „me-too“ 
tests), които  се основават  на сходни  научни  принципи  и измерват  или 
прогнозират  същия  биологичен  или токсичен  ефект  (14).  
2. Преди  приемане  на модифицираните  методи  (т.е. на предложени  поте­  
нциални  подобрения  на одобрен  метод  за изпитване ) трябва  да се 
извърши  оценка  за определяне  на ефекта  на предложените  изменения  
върху  ефективността  на изпитването  и степента , до която  тези 
изменения  засягат  наличната  информация  за другите  елементи  на 
процеса  на валидиране . В зависимост  от броя  и естеството  на предл­  
ожените  изменения , генерираните  данни  и придружаващата  докуме­  
нтация  за тези изменения , те следва  или да бъдат  предмет  на същия  
процес  на валидиране , който  е описан  за ново  изпитване , или, ако е 
приложимо , на ограничена  оценка  на надеждността  и приложимостта  
чрез използване  на приети  СЕ (14).  
3. Сходните  или модифицирани  методи , предложени  за използване  
съгласно  настоящия  метод  за изпитване  (МИ), следва  да бъдат  
оценени , за да се определят  надеждността  и точността  им, като се 
използват  химикали , които  са представителни  за пълната  скала  на 
резултатите  от LLNA. С оглед  да се избегне  своеволно  използване  
върху  животни , настойчиво  се препоръчва  лицата , които  разработват  
модела , да се консултират  със съответните  органи  преди  да започнат  
изследвания  за валидиране  в съответствие  със СЕ и указанията , 
формулирани  в настоящия  МИ. 
4. Тези  СЕ се основават  на хармонизираните  СЕ на Междуведомствения  
координационен  комитет  за валидиране  на алтернативни  методи  на 
САЩ  (US-ICCVAM), Европейския  център  за валидиране  на 
алтернативни  методи  на ЕО EC-ECVAM) и Японския  център  за 
валидиране  на алтернативни  методи  (JaCVAM) (12) за оценяване  на 
валидността  на сходни  или модифицирани  версии  на LLNA. СЕ се 
състоят  от съществени  елементи  на метода  за изпитване , препоръч­  
ителни  референтни  химикали  и стандарти  за точност  и надеждност , на 
които  предложеният  метод  следва  да отговаря  или които  той следва  да 
надхвърля . 
I. Съществени  елементи  на метода  за изпитване  
5. Следните  елементи  следва  да бъдат  включени  в протокола  за метода  за 
изпитване , за да се гарантира , че даден  сходен  или модифициран  метод  
за LLNA е по своя  механизъм  и функционално  аналогичен  на LLNA и 
измерва  същия  биологичен  ефект : 
— изпитваното  вещество  следва  да се прилага  локално  и на двете  уши 
на мишката ; 
— пролиферацията  на лимфоцитите  следва  да се измерва  в лимфните  
възли , дрениращи  мястото  на прилагане  на химикала  за изпитване ; 
— пролиферацията  на лимфоцитите  следва  да се измерва  по време  на 
индукционната  фаза  на кожната  сенсибилизация ; ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 616
 
— за изпитваните  вещества , най-високата  доза следва  да бъде  максим­  
алната  концентрация , която  не причинява  системна  токсичност  и/или 
прекомерно  локално  кожно  дразнене  на мишката . За положителните  
референтни  химикали , най-високата  доза следва  да бъде  поне  
толкова  висока , колкото  стойностите  на EC3 за LLNA на съотв­  
етните  референтни  химикали  (вж. таблица  1), без да причинява  
системна  токсичност  и/или прекомерно  локално  кожно  дразнене  на 
мишката ; 
— паралелна  съдържаща  само  носител  контрола  следва  да бъде  
включена  във всяко  изпитване  и, където  е подходящо , следва  също  
да се използва  паралелна  положителна  контрола ; 
— следва  да се използват  минимум  четири  животни  за подложена  на 
определена  доза група ; 
— могат  да се събират  или индивидуални , или сборни  данни  за 
животните . 
Ако някой  от тези критерии  не е изпълнен , разглежданите  тук стандарти  
за ефективност  не могат  да се използват  за валидиране  на сходния  или 
модифициран  метод . 
II. Минимален  списък  на референтните  химикали  
6. В хармонизираните  СЕ на Междуведомствения  координационен  
комитет  за валидиране  на алтернативни  методи  на САЩ  (US- 
ICCVAM), Европейския  център  за валидиране  на алтернативни  методи  
на ЕО (EC-ECVAM) и Японския  център  за валидиране  на алтернативни  
методи  (JaCVAM) (12) е идентифициран  минимален  брой  от 18 
референтни  химикала , които  следва  да се използват , и четири  незадъ­  
лжителни  референтни  химикала  (т.е. вещества , които  предизвикват  или 
фалшиво  положителни , или фалшиво  отрицателни  резултати  при LLNA 
в сравнение  с резултатите , получени  при изследвания  върху  човек  или 
върху  морски  свинчета  (Б.6 или Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) 
(13) и следователно  предоставят  възможност  за доказване  на еднаква  
или по-добра  ефективност , отколкото  LLNA), които  са включени  в СЕ 
за LLNA. Критериите  за подбор  за идентифицирането  на тези химикали  
бяха  следните : 
— списъкът  на референтните  химикали  е представителен  за видовете  
вещества , които  обичайно  се изпитват  за откриване  на потенциал  за 
кожна  сенсибилизация , както  и спектъра  от реакции , които  LLNA е 
способно  да измерва  или прогнозира ; 
— тези вещества  имат  ясно  определена  химична  структура ; 
— за всяко  от веществата  имаше  налични  данни  за LLNA от тестове  
върху  морски  свинчета  (т.е. глава  Б.6, Указание  за изпитване  406 на 
ОИСР ) (13), и (където  това е възможно ) от изследвания  върху  хора ; 
както  и 
— тези вещества  лесно  могат  да бъдат  намерени  от търговски  изто­  
чници . 
Препоръчителните  референтни  химикали  са посочени  в таблица  1. 
Изпитванията , при които  се използват  предлаганите  референтни  
химикали , следва  да бъдат  оценявани  с носителя , с който  са посочени  
в таблица  1. В случаите , в които  посоченото  вещество  не е налично , 
могат  да бъдат  използвани  други  вещества , които  отговарят  на 
критериите  за избор , като се предостави  подходяща  обосновка . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 617
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 618
 ▼M3 
Таблица  1 
Препоръчителни  референтни  химикали  за стандартите  за ефективност  за LLNA  
Номер  Химикали  ( 1 ) CAS № Форма  Носител  ( 2 ) EC3 % (  3 ) N (  4 ) 0,5x – 2,0x EC3 Действ­  
ителен  
обхват  на 
EC3 LLNA 
спрямо  МС LLNA 
спрямо  рез. 
при хора 
1 5- хлоро -2-метил -4-изотиазолин -3-он (CMI)/2- 
метил -4-изотиазолин -3-он (MI) (  5 ) 26172-55-4/ 
2682-20-4 Течна  DMF 0,009 1 0,0045—0,018 НИ +/+ +/+ 
2 DNCB 97-00-7 Твърда  AOO 0,049 15 0,025—0,099 0,02—0,0 ­
94 +/+ +/+ 
3 4- фенилендиамин  106-50-3 Твърда  AOO 0,11 6 0,055—0,22 0,07—0,1 ­
6 +/+ +/+ 
4 Кобалтов  хлорид  7646-79-9 Твърда  DMSO 0,6 2 0,3—1,2 0,4—0,8 +/+ +/+ 
5 Изоевгенол  97-54-1 Течна  AOO 1,5 47 0,77—3,1 0,5—3,3 +/+ +/+ 
6 2- меркаптобензотиазол  149-30-4 Твърда  DMF 1,7 1 0,85—3,4 НИ +/+ +/+ 
7 Цитрал  5392-40-5 Течна  AOO 9,2 6 4,6—18,3 5,1—13 +/+ +/+ 
8 Хидроксилимонена  киселина  (HCA) 101-86-0 Течна  AOO 9,7 21 4,8—19,5 4,4—14,7 +/+ +/+ 
9 Евгенол  97-53-0 Течна  AOO 10,1 11 5,05—20,2 4,9—15 +/+ +/+ 
10 Фенил  бензоат  93-99-2 Твърда  AOO 13,6 3 6,8—27,2 1,2—20 +/+ +/+ 
11 Канелен  алкохол  104-54-1 Твърда  AOO 21 1 10,5—42 НИ +/+ +/+ 
12 Имидазолидинил  уреа  39236-46-9 Твърда  DMF 24 1 12—48 НИ +/+ +/+ 
13 Метилметакрилат  80-62-6 Течна  AOO 90 1 45— 100 НИ +/+ +/+ 
14 Хлорбензен  108-90-7 Течна  AOO 25 1 Не е 
приложимо  Не е 
приложи­  
мо –/– –/ (*) 
15 Изопропанол  67-63-0 Течна  AOO 50 1 Не е 
приложимо  Не е 
приложи­  
мо –/– –/+
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 619
 ▼M3 
Номер  Химикали  ( 1 ) CAS № Форма  Носител  ( 2 ) EC3 % (  3 ) N (  4 ) 0,5x – 2,0x EC3 Действ­  
ителен  
обхват  на 
EC3 LLNA 
спрямо  МС LLNA 
спрямо  рез. 
при хора 
16 Млечна  киселина  50-21-5 Течна  DMSO 25 1 Не е 
приложимо  Не е 
приложи­  
мо –/– –/ (*) 
17 Метил  салицилат  119-36-8 Течна  AOO 20 9 Не е 
приложимо  Не е 
приложи­  
мо –/– –/– 
18 Салицилова  киселина  69-72-7 Твърда  AOO 25 1 Не е 
приложимо  Не е 
приложи­  
мо –/– –/– 
Незадължителни  вещества  а доказване  на подобрена  ефективност , свързана  с LLNA 
19 Натриев  лаурилсулфат  151-21-3 Твърда  DMF 8,1 5 4,05—16,2 1,5—17,1 +/– +/– 
20 Етиленгликол  диметакрилат  97-90-5 Течна  MEK 28 1 14—56 НИ +/– +/+ 
21 Ксилол  1330-20-7 Течна  AOO 95,8 1 47,9—100 НИ +/ (**) +/– 
22 Никелов  хлорид  7718-54-9 Твърда  DMSO 5 2 Не е 
приложимо  Не е 
приложи­  
мо –/+ –/+  
Съкращения : AOO = ацетон : зехтин  (4:1, об./об.); CAS № = регистрационен  номер  съгласно  химичния  регистър  на Службата  за химични  индекси ; DMF =  N,N -диметилформамид ; DMSO = диметил  сулфоксид ; 
DNCB = 2,4- динитрохлорбензен ; EC3 = оценена  концентрация , необходима  за постигането  на стимулационен  индекс  със стойност  3; МС = резултат  от изследването  върху  морски  свинчета  (т.е. глава  Б.6 или 
Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) (13); HCA = хексилканелен  алдехид ; течна  = течна  форма ; LLNA = резултат  от изследването  на локалните  лимфни  възли  върху  мишки  (т.е. глава  Б.42, Указание  за изпитване  
429 на ОИСР ) (1); MEK = метилетилкетон ; NA = не е приложимо , тъй като стимулационният  индекс  е < 3; НИ = не е изчислено , тъй като данните  са получени  от едно  изпитване ; твърда  = твърда  форма ; носител  = 
носител  на изпитваното  вещество  
(*) Химикал , за който  се счита , че не предизвиква  кожна  сенсибилизация  при хората  въз основа  на факта , че не са констатирани  клинични  резултати  от кожно -алергични  проби , не е включен  като алерген  в 
наборите  за кожно -алергични  проби  и не са установени  докладвани  случаи  за сенсибилизация  при хора . 
(**) Няма  налични  данни  за резултата  от изследване  върху  морски  свинчета . 
( 1 ) Химикалите  следва  да се приготвят  ежедневно , освен  ако данните  за устойчивостта  им показват , че те могат  да се съхраняват . 
( 2 ) Поради  потенциалното  въздействие  на различните  носители  върху  ефективността  на LLNA, следва  да се използва  препоръчителният  носител  за всеки  референтен  химикал  (24) (32). 
( 3 ) Средна  стойност , когато  са налични  повече  от една  стойности  на EC3. За веществата  даващи  отрицателен  резултат  (т.е. със стимулационен  индекс  < 3 се предоставя  най-високата  изпитана  концентрация ). 
( 4 ) Брой  на изпитванията  LLNA, от които  са получени  данните . 
( 5 ) Предлаган  на пазара  като Kathon CG (CAS № 55965-84-9), който  представлява  смес  в съотношение  3:1 от CMI и MI. Относителните  концентрации  на всеки  елемент  варират  от 1,1 % до 1,25 % (CMI) и 0,3 % до 
0,45 % (MI). Неактивните  елементи  са магнезиеви  соли  (21,5 % до 24 %) и меден  нитрат  (0,15 % до 0,17 %), като останалата  част на състава  е вода  в процентно  съотношение  от 74 % до 77 %. Kathon CG може  
лесно  да бъде  намерен  от Sigma-Aldrich и Rohm and Haas ( понастоящем  Dow Chemical Corporation).
 III. Определени  стандарти  за надеждност  и точност  
7. Точността  на сходен  или модифициран  метод  за LLNA следва  да 
отговаря  на или да надвишава  точността  на СЕ за LLNA, когато  тя се 
оценява  чрез използване  на минимално  необходимите  18 референтни  
химикала , които  следва  да бъдат  използвани . Новият  или модиф­  
ицираният  метод  следва  да доведе  до правилно  класифициране  въз 
основа  на решение  „да/не“. При все това новият  или модифициран  
метод  може  да не класифицира  правилно  всички  химикали  от 
минимално  необходимите  референтни  химикали , които  следва  да 
бъдат  използвани . Ако например  един  от слабите  сенсибилизатори  е 
класифициран  неправилно , обосновката  за неправилното  класифициране  
и подходящите  допълнителни  данни  (напр . резултати  от изпитването , 
които  осигуряват  правилно  класифициране  на други  вещества  с 
физични , химични  и сенсибилизиращи  свойства , подобни  на свойствата  
на неправилно  класифицирания  референтен  материал ) могат  да бъдат  
счетени  за показващи  еквивалентна  ефективност . При тези обстоят­  
елства , статусът  на валидирането  на новия  или модифициран  метод  за 
LLNA се оценява  индивидуално  за всеки  отделен  случай . 
Вътрешнолабораторна  възпроизводимост  
8. За да бъде  определена  вътрешнолабораторната  възпроизводимост , 
следва  да бъде  оценен  нов или модифициран  метод  за LLNA, като се 
използва  сенсибилизиращо  вещество , което  е добре  характеризирано  в 
LLNA. Поради  това СЕ за LLNA се основават  на вариабилността  на 
резултатите  от повторни  изпитвания  на хексилканелен  алдехид  (HCA). 
С цел оценяване  на вътрешнолабораторната  надеждност , стойностите  на 
оценената  прагова  концентрация  (ECt) за HCA следва  да бъдат  
определени  в четири  различни  случая  с интервал  от поне  една  
седмица  между  отделните  изпитвания . Признак  за приемлива  вътрешно­  
лабораторна  възпроизводимост  е способността  на дадена  лаборатория  
във всяко  едно  изпитване  на HCA да получава  стойности  на ECt от 
5 % до 20 %, което  представлява  диапазон  от 0,5—2,0 пъти  средната  
EC3 стойност , посочена  за HCA (10 %) в LLNA ( вж. таблица  1). 
Междулабораторна  възпроизводимост  
9. Междулабораторната  възпроизводимост  на нов или модифициран  метод  
LLNA следва  да бъде  оценявана  като се използват  две сенсибилизиращи  
вещества , които  са добре  характеризирани  в LLNA. СЕ за LLNA се 
основават  на вариабилността  на резултатите  от изпитвания  на хидрокс­  
илимонена  киселина  (HCA) и 2,4-динитрохлоробензен  (DNCB) в 
различни  лаборатории . Стойностите  на ECt следва  да бъдат  определени  
независимо  чрез едно  изпитване , проведено  в поне  три отделни  
лаборатории . За да докаже  приемлива  междулабораторна  възпроизвод­  
имост , всяка  лаборатория  следва  да получи  стойности  на ECt от 5 % до 
20 % за HCA и от 0,025 % до 0,1 % за DNCB, което  представлява  
интервал  от 0,5—2,0 пъти  средната  стойност  на EC3 концентрация , 
посочена  за HCA (10 %) и съответно , за DNCB (0,05 %) на база 
LLNA (вж. таблица  1). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 620
 
Допълнение  2 
Определения  
Точност : степента  на близост  на съвпадение  на резултатите  от метода  за 
изпитване  и приетите  референтни  стойности . Това  е мярка  за ефективността  
на метода  за изпитване  и един  от аспектите  на неговата  приложимост . 
Терминът  често  се използва  взаимозаменяемо  с термина  „съвпадение “, за 
да се обозначи  делът  на верните  резултати  при даден  метод  за изпитване  (14).  
Еталонно  вещество : вещество , което  предизвиква  или не предизвиква  
сенсибилизация , използвано  като норма  за сравнение  с изпитваното  
вещество . Едно  еталонно  вещество  следва  да притежава  следните  
свойства : i) постоянен  и надежден  източник ; ii) структурно  и функционално  
сходство  с класа  на изпитваните  вещества ; iii) известни  физикохимични  
характеристики ; iv) потвърждаващи  данни  за известни  въздействия ; и v) 
известна  ефективност  за постигане  на желаната  реакция . 
Оценена  прагова  концентрация  (ECt): оценената  концентрация  на изпитвано  
вещество , която  е необходима  за постигането  на стимулационен  индекс , 
показващ  положителна  реакция . 
Оценена  концентрация , водеща  до стимулационен  индекс  3 (EC3): 
оценената  концентрация  на изпитвано  вещество , която  е необходима  за 
постигането  на стимулационен  индекс  със стойност  три. 
Вещество  с фалшиво  отрицателен  резултат : изпитвано  вещество , 
неправилно  определено  като даващо  отрицателен  резултат  или неактивно  
посредством  даден  метод  за изпитване , докато  в действителност  е 
веществото  дава положителен  резултат  или е активно . 
Вещество  с фалшиво  положителен  резултат : изпитвано  вещество , 
неправилно  определено  като даващо  положителен  резултат  или активно  
при дадено  изпитване , докато  в действителност  веществото  дава отриц­  
ателен  резултат  или е неактивно . 
Опасност : потенциалът  за получаване  на неблагоприятен  за здравето  или 
екологичен  ефект . Неблагоприятният  ефект  се проявява  само  при дост­  
атъчно  голяма  степен  на експозиция . 
Междулабораторна  възпроизводимост : мярка  за степента , в която  различни  квал­  
ифицирани  лаборатории , при използване  на един  и същи  протокол  и изпитване  на 
едни  и същи  вещества , могат  да получат  качествено  и количествено  сходни  
резултати . Междулабораторната  възпроизводимост  се определя  по време  на 
процесите  на предварително  валидиране  и валидиране  и показва  степента , в 
която  изпитването  може  да бъде  трансферирано  успешно  между  лабораториите , 
също  наричана  възпроизводимост  между  лабораториите  (14).  
Вътрешнолабораторна  възпроизводимост : определяне  на степента , в която  квал­  
ифицирани  служители  в рамките  на една и съща  лаборатория  могат  да 
възпроизведат  успешно  резултатите , като използват  конкретен  протокол  в 
различни  моменти . Също  наричана  възпроизводимост  в рамките  на 
лабораторията  (14).  
Вариантен  метод  за изпитване  (me-too test): разговорен  израз  за метод  за 
изпитване , който  е структурно  и функционално  сходен  с валидиран  и приет  
референтен  метод  за изпитване . Такъв  метод  за изпитване  би бил кандидат  
за последващо  валидиране . Използва  се взаимозаменяемо  с термина  „сходен  
метод  за изпитване “ (14).  
Отклоняваща  се стойност : отклоняващата  се стойност  е наблюдение , което  
подчертано  се различава  от други  стойности  в произволно  избрана  извадка  
от популация . 
Стандарти  за ефективност  (СЕ): стандарти  въз основа  на валидиран  метод  за 
изпитване , осигуряващи  основа  за оценка  на сравнимостта  на предложен  метод  
за изпитване , който  е по своя механизъм  и функционално  сходен  с валидирания  
метод . Включват : i) съществени  елементи  на метода  за изпитване ; ii) минимален  
списък  на референтните  химикали , избрани  измежду  химикалите , които  са били  
използвани  за доказване  на приемливата  ефективност  на валидирания  метод  за 
изпитване ; и iii) сходните  нива  за точност  и надеждност , въз основа  на 
получените  за валидирания  метод  за изпитване , които  предложеният  метод  за 
изпитване  следва  да демонстрира  при оценяването  чрез използване  на 
минималния  списък  на референтните  химикали  (14).  
Патентован  метод  за изпитване : метод  на изпитване , чието  производство  и 
дистрибуция  са ограничени  от патенти , авторски  права , търговски  марки  и др. ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 621
 
Осигуряване  на качеството : управленски  процес , при който  спазването  на 
лабораторни  стандарти  за изпитване , изисквания  и процедури  за водене  на 
дневници , както  и точността  на трансфера  на данни  се оценява  от лица , 
които  са независими  от лицата , изпълняващи  изпитването . 
Референтни  химикали : химикали , избрани  за използване  в процеса  на 
валидиране , чиито  реакции  по отношение  на системата  за in vitro  или in 
vivo референтни  изпитвания  или на представляващия  интерес  вид вече са 
известни . Тези  химикали  следва  да бъдат  представителни  за класовете  
химикали , за които  се очаква  да бъде  използван  методът  на изпитване , и 
следва  да представляват  пълният  спектър  от реакции , които  може  да се 
очакват  от химикалите , за които  може  да бъде  използван  настоящият  
метод : силни , слаби  и отрицателни  реакции . Могат  да се изискват  
различни  набори  от референтни  химикали  за отделните  етапи  на процеса  
на валидиране , както  и за отделните  методи  за изпитване  и приложения  на 
изпитването  (14).  
Приложимост : описание  на взаимовръзката  между  изпитването  и ефекта , 
представляващ  интерес , и дали  тя е значима  и полезна  за определена  цел. 
Това  е степента , в която  изпитването  правилно  измерва  или прогнозира  
биологичния  ефект , представляващ  интерес . Приложимостта  включва  
проучването  на точността  (съответствието ) на метода  за изпитване  (14).  
Надеждност : мярка  за степента , в която  даден  метод  за изпитване  може  да 
се извършва  възпроизводимо  в една  и съща  лаборатория  и в различни  
лаборатории  в течение  на времето , при използване  на един  и същи  
протокол . Надеждността  се оценява , като се изчислява  вътрешно - и межд­  
улабораторната  възпроизводимост  (14).  
Кожна  сенсибилизация : имунологичен  процес , който  възниква , когато  
податлив  индивид  е локално  изложен  на химичен  алерген  с индуциращо  
действие , който  предизвиква  кожна  имунна  реакция , водеща  до развиването  
на контактна  сенсибилизация . 
Стимулационен  индекс  (SI): стойност , изчислявана  с цел оценка  на поте­  
нциала  на дадено  изпитвано  вещество  да предизвиква  кожна  сенсиб­  
илизация , която  представлява  съотношението  на пролиферацията  в 
третираните  групи  спрямо  тази в паралелната  третирана  с носителя  
контролна  група . 
Изпитвано  вещество  (също  наричано  „изпитван  химикал “): всяко  вещество  
или смес , изпитвано (а) чрез използването  на настоящия  метод  за изпитване . 
Валидиран  метод  за изпитване : метод  за изпитване , за който  са извършени  
изследвания  за валидиране  за определяне  на приложимостта  (включително  
на точността ) и надеждността  му за конкретна  цел. Важно  е да се отбележи , 
че един  валидиран  метод  за изпитване  може  да не притежава  достатъчно  
ефективност  по отношение  на точността  и надеждността  си, за да се счита  
за приложим  за предлаганата  цел (14).  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 622
 
Б.43. НЕВРОТОКСИКОЛОГИЧНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  ПРИ  ГРИЗАЧИ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на ОИСР  ТG 424 (1997).  
Този  метод  е предназначен  да предостави  информацията , необ­  
ходима  за потвърждаване  или допълнително  охарактеризиране  
на потенциалната  невротоксичност  на химикали  при възрастни  
животни . Той може  да бъде  комбиниран  със съществуващи  
методи  за изпитване , чрез токсикологични  изследвания  с 
повтаряща  се доза или проведен  като самостоятелно  изследване . 
Препоръчва  се да бъдат  направени  консултации  с Ръководството  
на ОИСР  със стратегии  и методи  за изследване  на невротоксич­  
ността  (1), за да се подпомогне  определянето  на изследванията , 
основани  на този метод . Това  е особено  важно , когато  се разг­  
леждат  модификациите  на наблюденията  и процедурите  за 
изпитване , както  се препоръчва  при рутинно  прилагане  на 
този метод . Ръководството  е изготвено , за да подпомогне  
избора  на други  процедури  за изследване , които  се използват  
при определени  обстоятелства . 
Оценката  на развитието  на невротоксичността  не е обект  на този 
метод . 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
При извършването  на междинна  и окончателна  оценка  на токс­  
икологичните  характеристики  на химикала , е важно  да се 
разгледа  потенциалната  възможност  за невротоксични  ефекти . 
Методът  за систематични  изследвания  при повтарящи  се дози  
вече включва  наблюдения , които  прикриват  потенциалната  
невротоксичност . Този  метод  за изпитване  може  да се 
използва  за определяне  на изследване  за получаване  на допълн­  
ителна  информация  за или която  потвърждава  невротоксичните  
ефекти , наблюдавани  при систематичните  токсикологичните  
изследвания  с повтаряща  се доза. Въпреки  това, разглеждането  
на потенциалната  невротоксичност  в определени  класове  
химикали  може  да предложи  за по-подходящо  оценяването  
чрез използването  на метод , без предварителни  индикации  за 
потенциална  невротоксичност  от токсикологичните  изследвания  
при повтаряща  се доза. Такова  разглеждане  включва , например : 
— наблюдение  на неврологичните  признаци  или невропатолог­  
ичните  увреждания  от токсикологични  изследвания , 
различни  от систематичните  изследвания  с повтаряща  се 
доза, или 
— структурна  връзка  или друга  информация , която  ги свързва  с 
известни  невротоксични  вещества . 
В допълнение , може  да има други  случаи , при които  
използването  на този метод  да е подходящо ; за повече  
подробности  вижте  (1). 
Този  метод  е разработен , така че да може  да бъде  приспособен  
да посрещне  особените  нужди  от потвърждаване  на специф­  
ичната  хистопатологична  и мотивационна  невропатология  на 
химикала , както  и да осигури  охарактеризиране  и окачествяване  
на невротоксичните  отговори . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 623
 
В миналото  невротоксикологията  е била  приравнявана  с невроп­  
атията , включваща  невропатологични  увреждания  или 
неврологични  дисфункции , такива  като припадъци , парализи  
или треперене . Освен  това невропатията  е важен  израз  на 
невротоксикологията . Сега  е ясно , че има много  други  
признаци  за токсичност  на нервната  система  (напр . загуба  на 
двигателна  координация , сензорен  дефицит , дисфункции  при 
заучаване  и запаметяване ), които  не биха  могли  да се отразят  
на невропатията  или други  видове  изследвания . 
Този  невротоксикологичен  метод  за изследване  е предназначен  
за откриване  на големи  (основни ) невроповеденчески  и невроп­  
атологични  ефекти  при възрастни  гризачи . Докато  поведе­  
нческите  ефекти , дори  при отсъствие  на морфологични  
изменения , могат  да окажат  вредно  въздействие  върху  орга­  
низма , не всички  промени  в поведението  са характерни  за 
нервната  система . Поради  това, всички  наблюдавани  
изменения  трябва  да бъдат  оценявани  във връзка  с корел­  
ативните  хистопатологични , хематологични  или биохимични  
данни , както  и данни  от други  видове  токсичност , засягаща  
целия  организъм . Изследването , за което  се говори  в този 
метод , целящ  да осигури  възможност  за охарактеризиране  и 
количествено  определяне  на невротоксичните  отговори , 
включва  специфични  хистопатологичнии  и поведенчески  
процедури , които  биха  могли  допълнително  да бъдат  подп­  
омогнати  чрез електрофизиологични  и/или биохимични  
изследвания  (1)(2)(3)(4).  
Невротоксикантите  могат  да въздействат  върху  броя  на 
елементите  в рамките  на нервната  система  и чрез разнообразни  
механизми . Тъй като невротоксичният  потенциал  на всички  
вещества  може  да бъде  оценен  чрез провеждането  на неголям  
брой  изследвания , може  да се наложи  да се използват  други  in 
vivo или in vitro  изследвания , които  се специфични  за вида  набл­  
юдавана  или очаквана  невротоксичност . 
Този  метод  за изследване  може  също  да бъде  използван  във 
връзка  с насоката , посочена  в Ръководството  на ОИСР  за 
стратегии  и методи  за изследване  на невротоксичността  (1) за 
планиране  на изследванията , които  се провеждат , за да се 
охарактеризира  в бъдещето  или да се повиши  чувствителността  
при последователното  количествено  определяне  доза—отговор , 
или за по-доброто  оценяване  на нивото , при което  не се 
наблюдава  вреден  ефект , или за потвърждаване  на известните  
или допусканите  опасни  свойства  на химикала . Например  
изследванията  може  да имат  за цел идентифицирането  и 
оценяването  на невротоксичния (ите) механизъм (и) или 
допълването  на вече известна  данни , получени  при използването  
на основните  невроповеденчески  и невропатологични  процедури  
за наблюдения . Не е нужно  да се повтарят  такива  изследвания , 
данните  от които  могат  да бъдат  събрани  при прилагане  на 
стандартните  процедури , препоръчвани  в този метод , ако тези 
данни  са вече налични  и ако това не се счита  за необходимо  при 
интерпретиране  на резултатите  от изследването . 
Това  невротоксикологично  изследване , когато  се използва  
самостоятелно  или в комбинация , осигурява  информация , която : 
— позволява  да се определи , дали  нервната  система  е 
постоянно  или обратимо  повлияна  от изпитвания  химикал ; 
— допринася  за охарактеризирането  на измененията  в нервната  
система , свързани  с експозицията  на химикала  и за 
разбиране  на основния  механизъм ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 624
 
— позволява  да се определи  връзката  между  дозата , времето  и 
отговора , за да се оцени  нивото , при което  не се наблюдават  
вредни  ефекти  (което  може  да бъде  използвано  за уста­  
новяване  на критериите  за безопасност  за химикала ). 
При този метод  за изследване  изпитваното  вещество  се въвежда  
перорално . Възможно  е други  пътища  на постъпване  (напр . 
дермален  или инхалаторен ) да бъдат  по-подходящи , и е 
възможно  да бъде  изискано  модифициране  на препоръчваните  
процедури . Изборът  на път на постъпване  се съобразява , в 
зависимост  от профила  на експозицията  на човека  и наличната  
токсикологична  или кинетична  информация . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Вреден  ефект : е всяко  свързано  с третирането  изменение  
спрямо  първоначалното  състояние , в резултат  на което  се 
повлиява  на жизнеспособността  на организма , неговата  репрод­  
уктивност  или способността  му да се адаптира  към условията  на 
околната  среда . 
Доза : е количеството  прието  изпитвано  вещество . Дозата  се 
изразява  като маса  (g, mg) или като маса  на изпитваното  
вещество  за единица  тегло  на изследваното  животно  (напр . 
mg/kg), или като постоянни  хранителни  концентрации  (ррm). 
Дозиране : е общия  период , свързан  с дозата , честотата  на прием  
и продължителността  на дозиране . 
Невротоксичност : е вредно  изменение  в структурата  или 
функционирането  на нервната  система , в резултат  от експозиция  
с химичен , биологичен  или физичен  агент . 
Невротоксикант : е химичен , биологичен  или физичен  агент , 
способен  да причини  невротоксичност . 
NOAEL : е абревиатурата  на ниво , при което  не се наблюдава  
вреден  (неблагоприятен ) ефект  и представлява  най-високото  
ниво  на дозата , при която  не се наблюдават  находки  (неблаг­  
оприятни  промени ), свързани  с вредно  въздействие . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваният  химикал  се приема  по орален  път на постъпване  в 
обхвата  на дози , приемани  от няколко  групи  лабораторни  
гризачи . Нормално  се прилагат  повтарящи  се дози  и режимът  
на дозиране  може  да бъде  28 дни, субхроничен  (90 дни) или 
хроничен  (1 година  или по-дълъг  период ). Процедурата , 
представена  в този метод , също  може  да бъде  използвана  за 
изследване  на остра  невротоксичност . Животните  се изследват , 
за да се открият  или да се охарактеризират  поведенческите  
и/или неврологичните  аномалии . Обхватът , в който  може  да 
бъде  предизвикана  реакция  при въздействие  от страна  на 
невротоксикантите , се оценява  през всеки  един  период  на набл­  
юдение . В края  на експеримента  подгрупа  от животните  от 
всеки  пол, във всяка  група , се перфузират  in situ  и секторите  
на главния  мозък , гръбначния  мозък  и периферните  нерви  се 
подготвят  и изпитват . 
Когато  изследването  се провежда  като самостоятелно  изследване  
за проучване  на невротоксичността  или за охарактеризиране  на 
невротоксичните  ефекти , животните  във всяка  група , която  не се 
използва  за перфузия  и последваща  хистопатология  (вижте  
таблица  1), могат  да бъдат  използвани  за провеждане  на 
определени  невроповеденчески , невропатологични , неврох­  
имични  или електрофизиологични  процедури , които  могат  да 
допълнят  данните , получени  при стандартните  експерименти , 
чието  провеждане  се изисква  от този метод  (1). Тези  допълн­  
ителни  процедури  могат  да бъдат  особено  полезни , когато  има 
емпирични  наблюдения  или се очакват  ефекти , индикиращи  за 
специфичен  вид или група  невротоксичност , предизвикана  от 
химикала . Алтернативно , останалите  животни  могат  да бъдат  
използвани  за други  оценки , такива  като тези, посочени  в 
методите  за изпитване  чрез токсикологични  изследвания  с 
повтарящи  се дози  при плъхове . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 625
 
Когато  процедурите  на този метод  за изследване  се комбинират  
с тези на други  методи  за изследване , е необходимо  да има 
достатъчен  брой  животни , за да се удовлетворят  изискванията  
за наблюдения  и на двете  изследвания . 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗСЛЕДВАНЕ  
1.4.1.  Избор  на животински  видове  
Предпочитаният  вид от групата  на гризачите  е плъх , въпреки  че 
след  обосноваване , и други  видове  гризачи  могат  да бъдат  
използвани . Обикновено  при лабораторните  опити  се използват  
млади  възрастни  здрави  животни . Женските  индивиди  трябва  да 
не са раждали  и да не са бременни . Дозирането  нормално  трябва  
да започне , колкото  е възможно  по-скоро  след  отбиването  им, 
но за предпочитане , не по-късно  от периода , когато  животните  
са на шест  седмици , и преди  животните  да станат  на възраст  
девет  седмици . Обаче , когато  това изследване  се комбинира  с 
други  изследвания , това възрастово  изискване  се нуждае  от 
обосноваване . В началото  на изследването  вариациите  в 
теглото  на използваните  животни  трябва  да не надвишават  ± 
20 % от средното  тегло  за всеки  пол. Когато  се провежда , за 
кратък  период  от време , изследване  с повтаряща  се доза като 
предшестващо  дългосрочно  изследване , и при двете  изследвания  
трябва  да бъдат  използвани  животни  от една  и съща  порода  и от 
един  и същ вид. 
1.4.2.  Условия  за отглеждане  и хранене  
Температурата  в стаята  на опитните  животни  трябва  да бъде  22 
o С (± 3  o С). Въпреки  че относителната  влажност  трябва  да бъде  
поне  30 % и е препоръчително  тя да не надвишава  70 % в друг  
момент , освен  при почистване  на стаята , трябва  да се цели  да се 
постигне  50—60 % относителна  влажност . Светлината  трябва  да 
бъде  изкуствена , с последващи  12 часа светъл  период , 12 часа 
тъмен  период . Като  минимум  трябва  да се не се вдига  рязък  и 
силен  шум . За хранене  могат  да бъдат  използвани  конвенцион­  
алните  лабораторни  диети  с неограничен  достъп  до питейна  
вода . Изборът  на диета  може  да бъде  повлиян  от нуждата  да 
се осигури  подходящо  смесване  на изпитваното  вещество  след  
приемането  му по този метод . Животните  могат  да бъдат  
настанени  в клетките  индивидуално  или на малки  групи  от 
един  и същ пол. 
1.4.3.  Подготовка  на животните  
Здрави , млади  животни  са произволно  отделени  в контролни  
групи  и групи , на които  ще се въздейства . Клетките  трябва  да 
бъдат  подредени  по такъв  начин , че възможните  ефекти , в 
резултат  на местоположението  на клетката , да бъдат  сведени  
до минимум . Животните  индивидуално  се идентифицират  и се 
оставят  в клетките  си поне  (5) пет дни преди  започване  на 
изследването , за да се аклиматизират  към лабораторните  
условия . 
1.4.4.  Път на администриране  и подготовка  на дозите  
При този метод  за изследване  конкретно  се използва  орален  път 
на постъпване  на изпитваното  вещество . Оралният  прием  може  
да бъде  осъществен  чрез принудително  хранене , посредством  
диета , чрез питейната  вода  или чрез капсули . Други  пътища  на 
администриране  (напр . кожен  или инхалаторен  път на 
постъпване ) също  могат  да бъдат  използвани , но може  да се 
изиска  модифициране  на препоръчваните  процедури . Изборът  
на подходящия  път на постъпване  се съобразява  в зависимост  
от профила  на експозицията  на човека  и наличната  токсик­  
ологична  или кинетична  информация . Трябва  да се посочат  
съображенията  за избора  на съответния  път на постъпване , 
както  и резултатите  от модификациите  на процедурите  на този 
метод  за изпитване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 626
 
Когато  е необходимо , изпитваното  вещество  може  да бъде  разт­  
ворено  в подходящ  разтворител . Препоръчва  се да бъде  
обмислена  първо  възможността  за използване  на воден  разтвор /сус­ 
пензия , после  — възможността  за използване  на разтвор /суспензия  
в масло  (напр . царевично  масло ) и едва след това — възможността  
за използване  на разтвор /суспензия  в други  разтворители . Трябва  да 
бъдат  известни  токсичните  характеристики  на разтворителя . В 
допълнение , трябва  да бъдат  дадени  следните  характеристики  на 
разтворителя : влияние  на разтворителя  върху  абсорбцията , 
разпределението , метаболизма  или задържането  на изпитваното  
вещество , което  може  да промени  токсичните  си характеристики ; 
и ефектите  върху  консумирането  на храна  или вода , или 
хранителното /питателното  състояние  на животните . 
1.5. ПРОЦЕДУРИ  
1.5.1.  Брой  и пол на животните  
Когато  изследването  се провежда  като самостоятелно  изследване , 
трябва  да бъдат  използвани  поне  20 животни  (10 от женски  пол и 
10 от мъжки  пол) за всяка  доза и контролна  група  при оценяването  
на подробните  клинични  и функционални  наблюдения . Най- 
малко  пет животни  от мъжки  пол и пет животни  от женски  пол 
трябва  да бъдат  подложени  на перфузия  in situ  и използвани  за 
снемане  на подробна  неврохистопатология  в края  на 
изследването . В случаите , при които  се наблюдава  за признаци  
на невротоксични  ефекти  само  група  от ограничен  брой  
животни , при дадена  доза, трябва  да бъде  обърнато  внимание  на 
включването  на тези животни  в онези  групи , избрани  за перфузия . 
Когато  изследването  се провежда  в комбинация  с изследване  за 
токсичност  с повтарящи  се дози , трябва  да бъдат  използвани  
подходящ  брой  животни , за да се постигнат  целите  и на двете  
изследвания . Минималният  брой  животни  в група  при различните  
комбинации  от изследвания  са представени  в таблица  1. Ако се 
планира  убиване  или наблюдение  на обратимостта , продължа­  
ването  или забавеното  появяване  на токсични  ефекти  след  
третирането  при възстановяващи  се групи  или когато  се отчитат  
допълнителни  наблюдения , тогава  броят  на животните  трябва  да 
бъде  увеличен , за да бъде  сигурно , че необходимият  брой  животни  
за наблюдения  и хистопатология  е в наличност . 
1.5.2.  Третирани  и контролни  групи  
Обикновено  се използват  групи , третирани  с най-малко  три дози  и 
контролна  група , но ако от оценката  на други  данни  се установи , 
че не трябва  да се очакват  ефекти  при повтаряща  се доза от 1 000 
mg/kg телесно  тегло /ден, може  да бъде  проведено  ограничено  
изследване . Ако няма  подходящи  налични  данни , може  да бъде  
проведено  изследване  за намиране  на обхвата , с което  да се подп­  
омогне  определянето  на дозите , които  ще бъдат  използвани . С 
изключение  на третиране  с изпитваното  вещество , животните  в 
контролната  група  трябва  да бъдат  отглеждани  по идентичен  
начин  на този, при животните  от третираната  група . Ако се 
използва  разтворител  при администриране  на изпитваното  
вещество , контролната  група  трябва  да приеме  количество , 
равняващо  се на най-високия  използван  обем  на разтворителя . 
1.5.3.  Проверка  за достоверност  
Лабораторията , провеждаща  изследването , трябва  да представи  
данни , удостоверяващи  способността  ѝ да извърши  изследването  
и чувствителността  на използваната  процедура . Тези  данни  
трябва  да осигуряват  доказателство  за способността  за 
откриване  и количествено  определяне , където  е подходящо , на 
промените  в различните  крайни  точки , препоръчвани  за набл­  
юдение , такива  като автономни  признаци , сензорни  реакции , 
силно  схващане  на крайниците  и двигателна  активност . 
Информация  за химикалите , които  причиняват  различни  
видове  невротоксични  отговори  и които  могат  да бъдат  
използвани  като вещества  за позитивен  контрол , може  да бъде  
намерена  в препратки  от 2 до 9. Могат  да бъдат  използвани  
исторически  данни , ако съществените  аспекти  на експеримент­  
алните  процедури  остават  едни  и същи . Препоръчва  се 
периодично  актуализиране  на историческите  данни . Трябва  да 
бъдат  получени  нови  данни , демонстриращи  непрекъснатата /­ 
непроменената  чувствителност  на процедурите , когато  някои  
важни  елементи  при провеждането  на изследването  или 
процедурите , са били  променени  от изпитващата  лаборатория . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 627
 
1.5.4.  Избор  на доза  
Нивата  на дозите  трябва  да бъдат  избрани  като се вземат  предвид  
всякакви  предварително  налични  данни  за наблюдаваните  токс­  
ичност  и кинетика  при изпитваното  съединение  или свързани  с 
него материали . Нивото  на най-високата  доза трябва  да бъде  
избрано  с цел да се предизвикат  невротоксични  ефекти  или ясни  
системни  токсични  ефекти . Следователно  намаляващата  поредица  
от нива  на дозите  трябва  да бъде  избирана  с оглед  на получаване  на 
някакъв , предизвикан  от дозата , отговор  и липсата  на наблюдаван  
вреден  ефект  (NOAEL) при най-ниското  ниво  на дозата . По 
принцип  нивата  на дозите  трябва  да бъдат  определени  така, че 
началните  токсични  ефекти  върху  нервната  система  да могат  да 
бъдат  разграничени  от ефектите , свързани  със засягащата  целия  
организъм  токсичност . Два до три интервала  често  са достатъчни  
(оптимум ) и добавянето  на четвърта  група  за изпитване  често  е за 
предпочитане  при използването  на много  големи  интервали  (напр . 
повече  от фактор  10) между  дозите . Където  е възможно , трябва  да 
се има предвид , че трябва  да се направи  разумна  (приемлива ) 
оценка  на експозицията  върху  хората . 
1.5.5.  Гранично  изследване  
Ако изследването  при еднократно  ниво  на доза от най-малко  1 000 
mg/kg телесно  тегло /ден, което  използва  описаната  процедура , не 
предизвиква  видими  невротоксични  ефекти  и ако не би трябвало  да 
се очаква  токсичност , въз основа  на данни  от структурно  свързани  
(структурноподобни ) съединения , тогава  може  да не е необходимо  
провеждането  на пълното  изследване , използващо  три нива  на 
дозите . Очакваната  експозиция  върху  хората  може  да индикира  
необходимостта  при ограниченото  изследване  да бъде  използвано  
по-високо  ниво  на дозиране  чрез орален  прием . При други  пътища  
на администриране , такива  като инхалация  или дермално  прил­  
агане , често  физико -химичните  свойства  на изпитваното  вещество  
може  да наложат  максималното  достижимо  ниво  на експозицията . 
За провеждането  на изследване  за остра  орална  токсичност  дозата  
за ограничено  изследване  трябва  да бъде  поне  2 000 mg/kg.  
1.5.6.  Прием  на дозите  
Животните  се дозират  с изпитваното  вещество  ежедневно , в продъ­  
лжение  на седем  дни, всяка  седмица , за период  най-малко  от 28 дни; 
използването  на петдневен  режим  на дозиране  или на по-кратък  
период  на експозиция , е необходимо  да бъде  обосновано . Когато  
изпитваното  вещество  се приема  чрез принудително  хранене , това 
трябва  да се прави  с еднократна  доза, посредством  стомашна  тръба  
или подходяща  интубационна  канюла . Максималният  обем  
течност , който  може  да бъде  администриран  на един  прием , 
зависи  от размера  на изследваното  животно . Обемът  не трябва  да 
надвишава  1 ml/100 g телесно  тегло . В случай  на водни  разтвори , 
обаче , може  да бъде  обмислена  евентуалното  използване  на 
количество  до 2 ml/100 g телесно  тегло . С изключение  на 
дразнещи  или корозивни  вещества , които  обикновено  показват  
изострени  дразнещи  ефекти  при по-високи  концентрации , 
варирането  (променливостта ) в изпитвания  обем  трябва  да бъде  
минимизирано  чрез регулиране  на концентрацията , за осигуряване  
на постоянен  обем  при всички  нива  на дозите . 
За вещества , приемани  чрез диетата  или питейната  вода , е важно  
да се удостовери , че включените  в тях количества  на 
изпитваното  вещество , не оказват  влияние  върху  нормалното  
хранене  или водния  баланс . Когато  изпитваното  вещество  се 
приема  в диетата , могат  да бъдат  използвани  постоянната  
диетична  концентрация  (ррm) или постоянно  ниво  на дозата  
спрямо  телесното  тегло  на животното ; трябва  да бъде  
определена  и алтернатива  за използване . За вещество , админ­  
истрирано  чрез принудително  хранене , дозата  трябва  да бъде  
давана  по подобни  начини  ежедневно , и регулирана  при необ­  
ходимост  за поддържане  или постоянно  ниво  на дозата  спрямо  
телесното  тегло  на животното . Когато  се използва  изследване  с 
повтаряща  се доза като предшестващо  (предварително ) 
дългосрочно  изследване , и при двете  изследвания  трябва  да 
бъде  използвана  подобна  диета . При изследване  за остра  токс­  
ичност , ако не е възможно  еднократно  дозиране , дозата  може  да 
бъда  давана  на малки  порции  (фракции , части ) в продължение  
на период , който  не надвишава  24 часа. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 628
 
1.6. НАБЛЮДЕНИЯ  
1.6.1.  Честота  на наблюденията  и изследванията  
При изследвания  с повтарящи  се дози , периодът  на наблюдения  
трябва  да покрива  периода  на дозиране . При изследване  за остра  
токсичност  трябва  да се извършат  наблюдения  в 14-дневния  
период  след  третирането . При животни  от сателитните  
(съпътстващите ) групи , които  не са подложени  на експозиция  
през периода  след  третирането , наблюденията  трябва  да 
покриват  същия  този период . 
Наблюденията  трябва  да бъдат  правени  достатъчно  често , за да 
се увеличи  в максимална  степен  вероятността  за откриване  на 
някакви  поведенчески  и/или неврологични  аномалии . За предп­  
очитане  е наблюденията  да бъдат  правени  по едно  и също  време  
всеки  ден, като се обърне  внимание  на максималния  период  за 
очаквани  ефекти  след  дозирането . Честотата  на клиничните  
наблюдения  и функционалните  изследвания  е резюмирана  в 
таблица  2. Ако кинетични  или други  данни , събрани  от 
предишни  изследвания , показват  необходимост  от използване  
на различни  времеви  моменти  за наблюдения , изследвания  или 
периодите  след  наблюдение , трябва  да бъде  приет  алтернативен  
график , за да се получи  в максимална  степен  информация . 
Трябва  да се обмисли  и обосновка  на промените  в графика . 
1.6.1.1.  Наблюдения  върху  общото  здравословно  състояние  и 
смъртност /заболеваемост  
Всички  животни  трябва  да бъдат  внимателно  наблюдавани  най- 
малко  веднъж  на ден, във връзка  с тяхното  здравословно  
състояние , както  и най-малко  два пъти  дневно , в случай  на 
заболяване  или смърт . 
1.6.1.2.  Подробни  клинични  наблюдения  
Подробни  клинични  наблюдения  трябва  да бъдат  правени  върху  
всички , избрани  за тази цел, животни  (вижте  таблица  1), веднъж  
преди  първата  експозиция  (за да са възможни  сравнения  в тази 
връзка ) и на различни  интервали  от време  след  това, в 
зависимост  от продължителността  на изследването  (вижте  
таблица  2). Подробни  клинични  наблюдения  върху  сателитни  
(съпътстващи ) възстановяващи  се групи  трябва  да бъдат  
направени  в края  на възстановителния  период . Подробните  
клинични  наблюдения  трябва  да бъдат  направени  извън  
домашната  клетка  на стандартна  арена . Те трябва  внимателно  
да бъдат  записани  чрез използване  на голям  брой  системи , 
които  включват  критерии  или голям  брой  мащаби  за всяко  
измерване  при наблюденията . Използваните  критерии  или 
мащаби  трябва  да бъдат  ясно  (категорично ) определени  от 
изпитвателната  лаборатория . Трябва  да бъде  направено  усилие  
да се осигури  минимално  вариране  в условията  за изследване  
(несистематично  свързани  с третирането ) и тези наблюдения  да 
се провеждат  от обучени  наблюдатели , които  не са запознати  с 
действителното  третиране . 
Препоръчва  се наблюденията  да бъдат  провеждани  по 
структуриран  начин , в който  систематично  се прилагат  добре  
дефинирани  критерии  (включително  определението  на 
понятието  „обхват “) при всяко  животно  за всяко  време  на набл­  
юдение . „Нормалният  обхват “ трябва  да бъда  адекватно  докуме­  
нтиран . Всички  наблюдавани  признаци  трябва  да бъдат  
записани . Когато  е възможно , големината  (размерът ) на набл­  
юдаваните  признаци  също  трябва  да бъде  записана . Клиничните  
наблюдения  трябва  да включват , но без да се ограничават  до, 
изменения  в кожа , козина , очи, лигавици , поява  на секреция  и 
екскреция  и автономна  дейност  (напр . лакримация , пилоерекция , 
размер  на зениците , необичайни  респираторни  модели  и/или 
дишане  през устата , някакви  необичайни  признаци  на 
уриниране  и дефекация , и обезцветена  урина ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 629
 
Всякакви  необичайни  отговори , свързани  с положение  на тялото , 
ниво  на активност  (напр . понижено  или повишено  проучване  на 
стандартна  арена ) и координация  на движенията  трябва  да бъдат  
отбелязани . Промените  в походката  (напр . клатушкаща  се 
„патешка “ походка , атаксия ), позата  (напр ., претърбване ) и реактив­  
ността  при отглеждане , поведение  или други  стимули  на околната  
среда , както  и наличието  на клонични  или тонични  (ободряващи ) 
движения , конвулсии  или тремори , стереотипи  (напр . прекомерено  
чесане , необичайни  движения  на главата , серийни  (стандартни ) 
цикли ) или странно  поведение  (напр . хапане  или прекомерено  
облизване , самоосакатяване , вървеж  в обратна  посока  (на заден  
ход), издаване  на двуци ) или агресивност  трябва  да бъдат  записани . 
1.6.1.3.  Функционални  изследвания  
По подобие  на подробните  клинични  наблюдения , функционалните  
изследвания  също  трябва  да бъдат  проведени  веднъж  преди  експоз­  
ицията  и често  след това при всички , избрани  за тази цел, животни  
(вижте  таблица  1). Честотата  на функционалното  изследване  също  
зависи  от продължителността  на експеримента  (вижте  таблица  2). В 
допълнение  към периодите  на наблюдение , посочени  в таблица  2, 
трябва  да бъдат  направени  функционални  наблюдения  върху  
сателитните  възстановяващи  се групи , колкото  е възможно  по- 
близо , до момента  на убиването  при завършване  на изследването . 
Функционалните  изследвания  трябва  да включват  сензорна  
реактивност  към стимули  от различен  вид (модалност ) [напр . 
слухови , визуални  и рецепторни  стимули  (5)(6)(7)], оценка  на 
силата  на схващане  на крайниците  (8) и оценка  на двигателната  
активност  (9). Двигателната  активност  трябва  да бъде  измерена  с 
автоматичен  уред , способен  да улови  и пониженията , и повиш­  
енията  в активността . Ако се използва  друга  определена  система , 
тя трябва  да бъде  количествено  определена  и нейната  чувствит­  
елност  и надеждност  трябва  да бъде  демонстрирана . Всеки  уред  
трябва  да бъда  проверен , за да се осигури  надеждност  през време  
на и при съвместимост  между  уредите . Повече  подробности  за 
процедурите , които  трябва  да бъдат  следвани , са дадени  в съотв­  
етните  препратки . Ако няма  данни  (напр . структура  — активност , 
епидемиологични  данни , други  токсикологични  изследвания ), 
които  да индикират  потенциалните  невротоксични  ефекти , трябва  
да бъде  обмислено  включването  на по-специализирани  изследвания  
на сензорната  и двигателната  функция  или научаване  и запам­  
етяване , за по-подробно  изследване  на тези възможни  ефекти . 
Повече  информация  за по-специализираните  изследвания  и 
тяхното  използване  е представена  в (1). 
По изключение , животните , които  проявяват  признаци  на токс­  
ичност  в степен , която  значително  би повлияла  на функцион­  
алното  изследване , могат  да бъдат  извадени  от това изследване . 
Трябва  да бъда  представено  обяснение  (да се обоснове ) 
елиминирането  на животните  от функционалното  изследване . 
1.6.2.  Телесно  тегло  и консумация  на храна /вода  
При изследвания  с продължителност  до 90 дни, всички  животни  
трябва  да бъдат  претегляни  поне  веднъж  на седмица  и трябва  да 
бъдат  правени  най-малко  ежеседмични  измервания  на консум­  
ацията  на храна  (консумацията  на вода , когато  изпитваното  
вещество  се администрира  чрез такава  среда ). При дългосрочни  
изследвания , всички  животни  трябва  да бъдат  претегляни  поне  
веднъж  седмично , в продължение  на първите  13 седмици  и най- 
малко  веднъж  на всеки  четири  седмици  след  това. Трябва  да 
бъдат  правени  измервания  и на консумацията  на храна  (консум­  
ацията  на вода , когато  изпитваното  вещество  се администрира  
чрез такава  среда ) поне  веднъж  седмично , в продължение  на 
първите  13 седмици  и след  това на приблизителни  тримесечни  
интервали , освен  ако промени  в здравословното  състояние  или в 
телесното  тегло  не налагат  нещо  друго . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 630
 
1.6.3.  Офталмология  
При изследвания , по-дълги  от 28 дни, офталмологичното  
изследване , използващо  офталмоскоп  или подходящ  еквив­  
алентен  инструмент , следва  да бъде  проведено  преди  админ­  
истрирането  на изпитваното  вещество  и при завършване  на 
изследването , за предпочитане  при всички  животни  или поне  
при животните , при които  се прилага  високата  доза, и при 
тези от контролните  групи . Ако се открият  изменения  в очите  
или ако клинични  признаци  покажат  такава  необходимост , 
всички  животни  следва  да бъдат  изследвани . При дългосрочни  
(продължителни ) изследвания  офталмологичното  изследване  
следва  също  да бъде  провеждано  в продължение  на 13 
седмици . Не е необходимо  провеждането  на офталмологични  
изследвания , ако вече има такива  данни  от други  изследвания  
с подобна  продължителност  и при подобни  нива  на дозите . 
1.6.4.  Хематология  и клинична  биохимия  
Когато  невротоксичното  изследване  се провежда  в комбинация  
със систематично  токсикологично  изследване  с повтарящи  се 
дози , следва  да бъдат  проведени  хематологични  изследвания  и 
клиничните  биохимични  определяния , както  е посочено  в 
съответния  метод  за систематично  токсикологично  изследване . 
Изборът  на образци  следва  да бъде  направен  по такъв  начин , че 
всякакви  потенциални  ефекти  за неврологичното  поведение  да 
са минимизирани . 
1.6.5.  Хистопатология  
Невропатологичното  изследване  е предназначено  за допълване  и 
разширяване  на наблюденията , правени  по време  на in vivo  фазата  
на изследването . Тъкани  от поне  5 животни /пол/група  (вж. 
таблица  1 и следващия  параграф ) следва  да бъдат  фиксирани  in 
situ, чрез използване  на общопознати  перфузионни  и фиксиращи  
техники  (вж. препратка  3, глава  5 и препратка  4, глава  50). Всички  
наблюдавани  цялостни  промени  следва  да бъдат  записани . Когато  
изследването  се провежда  като самостоятелно  изследване  за 
скрининг  за невротоксичност  или за охарактеризиране  на неврот­  
оксичните  ефекти , останалите  части  от животните  могат  да бъдат  
използвани  и за специфични  невроповеденчески  (10)(11), невроп­  
атологични  (10)(11)(12)(13), неврохимични  (10)(11)(14)(15) или 
електрофизиологични  (10)(11)(16)(17) процедури , които  могат  да 
подпомогнат  процедурите  и изследванията , описани  тук, или да 
повишат  броя  на изследваните  обекти  от хистопатологията . Тези  
спомагателни  процедури  са от особено  значение , когато  
емпирични  наблюдения  или очаквани  ефекти  индикират  за спец­  
ифичен  вид или група  невротоксичност  (2)(3). Алтернативно , 
останалите  части  от животните  могат  също  да бъде  използвани  
за рутинни  патологични  оценки , както  е описано  в метода  за 
изследвания  с повтаряща  се доза. 
Следва  да бъде  изпълнена  цялостно  оцветяваща  процедура , 
такава  като хематоксилин  и еозин  (Н&Е), върху  всички  
тъканни  екземпляри  (проби ), поставени  в парафин , и следва  да 
бъде  проведено  микроскопско  изследване . Ако се допускат  или 
се наблюдават  признаци  на периферна  невропатия , следва  да 
бъдат  изследвани  пластично  поставени  проби  от периферна  
нервна  тъкан . Клиничните  признаци  също  могат  да предложат  
допълнителни  места  за изследване  или използване  на специални  
оцветяващи  процедури . Насока  за определянето  на допълн­  
ителни  места , които  да бъдат  изследвани , може  да бъде  
намерена  в (3)(4). Специални  подходящи  оцветители  за демо­  
нстриране  на определени  видове  патологични  промени  могат  
също  да бъдат  от полза  (18).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 631
 
Хистологично  следва  да бъдат  изследвани  представителни  
сектори  (части ) от централната  и периферната  нервна  система  
(вж. препратка  3, глава  5 и препратка  4, глава  50). Изследваните  
зони  обикновено  включват : предния  мозък , центъра  на главния  
мозък , включително  сектора  през хипокампуса , средния  мозък , 
малкия  мозък , продълговатия  мозък , окото  с оптичния  нерв  и 
ретината , лимфния  възел  при цервикален  и лумбарен  оток  (под­  
утина ), гръбначните  коренови  ганглии , гръбначните  и коремните  
коренови  влакна  (нишки ), разположения  близо  до средата  на 
тялото  седалищен  нерв , разположения  близо  до средата  на 
тялото  тибиален  нерв  (при коляното ) и мускулните  разклонения  
при тибиалния  нерв  на прасеца . Секторите  от лимфния  възел  и 
периферните  нерви  следва  да включват  едновременно  
кръстосани  или напречни  и надлъжни  сектори . Следва  да бъде  
обърнато  внимание  на васкулатурата  на нервната  система . Проба  
от скелетен  мускул , особено  мускула  на прасеца , следва  също  да 
бъде  изследвана . Специално  внимание  следва  да бъда  отделено  
на местата  с клетъчна  и нишковидна  структура  и известните  
модели  в CNS и PNS, които  ще бъдат  особено  повлияни  от 
невротоксикантите . 
Насока  за невропатологичните  алтернативи , които  обикновено  
произтичат  от експозиция  на токсичен  агент , може  да бъде  
намерена  в препратки  (3)(4). Препоръчва  се да се проведе  
поетапно  изследване  на тъканни  проби , при което  сектори  от 
групата , дозирана  с висока  доза, първо  се сравняват  с тези от 
контролната  група . Ако не се наблюдават  невропатологични  
изменения  в пробите  от тези групи , не се изискват  следващи  
анализи . Ако се наблюдават  невропатологични  изменения  в 
групата  с по-висока  доза, следва  да бъде  взета  проба  от всяка  
от потенциално  повлияните  тъкани  от групите  със средна  и 
ниска  доза и впоследствие  да бъдат  кодирани  и изследвани . 
Ако бъде  открито  някакво  доказателство  за невропатологични  
изменения  при количественото  определяне , тогава  следва  да 
бъде  проведено  второ  изследване  за всички  области  от 
нервната  система , показващи  такива  изменения . Сектори  от 
всички  дозирани  групи  от всяка  от потенциално  повлияните  
области  следва  да бъдат  кодирани  и изследвани  произволно , 
без да е известен  кодът . Честотата  и тежестта  на всяко  
поражение  следва  да бъдат  записани . След  като бъдат  оценени  
всички  области  от всички  дозирани  групи , кодът  може  да бъде  
разкрит  и да бъде  проведен  статистически  анализ  за оценяване  
на зависимостта  доза—отговор . Следва  да бъдат  описани  
примери  за различните  степени  на тежест  при всяко  поражение . 
Невропатологичните  находки  следва  да бъдат  оценени  в 
контекста  на наблюденията  и измерванията  върху  поведението , 
както  и от други  данни  от предишни  и паралелни  изследвания  за 
токсичността  за целия  организъм  от изпитваното  вещество . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Следва  да бъдат  осигурени  индивидуални  данни . В допълнение , 
всички  данни  следва  да бъдат  резюмирани  в таблична  форма , 
която  да показва  при всяко  изследване  или контролна  група  
броя  на животните  в началото  на изследването , броя  на 
животните , намерени  мъртви  по време  на изследването  или 
убити  по хуманни  съображения , броя  на появилите  се 
признаци  на токсичност , описание  на наблюдаваните  признаци  
на токсичност , включително  време  на появата  им, продължит­  
елност , вид и тежест  на всеки  от токсичните  ефекти , броя  на 
животните , показващи  поражения , включително  вид и тежест  на 
поражението (ята). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 632
 
2.2. ОЦЕНКА  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Находките  от изследването  следва  да бъдат  оценени  по 
отношение  на разпространение , тежест  и корелация  на 
невроповеденчески  и невропатологични  ефекти  (неврохимични  
или електрофизиологични  ефекти , както  и ако са били  включени  
допълнителни  изследвания ) и на всички  други  наблюдавани  
вредни  ефекти . Когато  е възможно , следва  да се оценят  
получените  числени  резултати  чрез използване  на подходящ  и 
общоприет  статистически  метод . Статистическите  методи  следва  
да бъдат  избрани  при планирането  (проектирането ) на 
изследването . 
3. ОТЧИТАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  следва  да включва  следната  
информация : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  (включително  изомеризация , чистота  и 
физикохимични  свойства ); 
— данни  за идентичността . 
Разтворител  (ако има такъв ): 
— обосноваване  на избора  на разтворител , ако е различен  от 
вода . 
Изследвани  животни : 
— използвани  видове /породи ; 
— брой , възраст  и пол на животните ; 
— водоизточник , условия  за отглеждане , аклиматизация , диета  
и т.н.; 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на 
изследването . 
Условия  на изследването : 
— подробности  за формулирането  на изпитваното  вещество /­ 
приготвянето  на диетата , постигната  концентрация , 
стабилност  и хомогенност  на препарата ; 
— определяне  на администрираните  дози , включително  
подробности  за разтворителя , обема  и физичната  форма  на 
приемания  материал ; 
— подробности  за администрирането  на изпитваното  вещество ; 
— обосноваване  на избраните  нива  на дозата ; 
— обосноваване  на пътя  на постъпване  и продължителността  на 
експозицията ; 
— конверсия  от диета /питейна  вода  с концентрация  на 
изпитваното  вещество  (ррm) към активна  доза (mg/kg 
телесно  тегло /ден), ако е приложимо ; 
— подробности  за качеството  на храната  и водата . 
Наблюдения  и процедури  за изследване : 
— подробности  за отнасянето  на животните  от всяка  група  към 
перфузионните  подгрупи ; 
— подробности  за точковите  системи  за оценяване , включ­  
ително  критерии  и точкови  мащаби  за всяко  измерване  при 
подробните  клинични  наблюдения ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 633
 
— подробности  за функционалните  изследвания  на сензорната  
реактивност  за стимулиране  на различни  модалности  (напр . 
слухови , визуални  и рецепторни ); за оценка  на издръжли­  
востта  при контролиране  на крайниците ; за оценка  на двигат­  
елната  активност  (включително  подробности  за автом­  
атизираните  устройства  за определяне  на активността ); и 
други  използвани  процедури ; 
— подробности  от офталмологичните  изследвания  и, където  е 
подходящо , хематологичните  изследвания  и клиничните  
биохимични  изследвания  със съответните  стойности  на 
базовата  линия ; 
— подробности  за специфичните  невроповеденчески , невропат­  
ологични , неврохимични  или електрофизиологични  
процедури . 
Резултати : 
— телесно  тегло /промени  в телесното  тегло , включително  на 
телесното  тегло  при убиването ; 
— консумация  на храна  и консумация  на вода , където  е 
подходящо ; 
— данни  за токсичен  отговор  по пол и ниво  на дозата , включ­  
ително  признаци  на токсичност  или смърт ; 
— вид, острота  и продължителност  (начално  време  и следващ  
курс ) на подробните  клинични  наблюдения  (дали  са 
обратими  или не); 
— подробно  описание  на всички  функционални  резултати  от 
изследването ; 
— находки  при аутопсията ; 
— подробно  описание  на всички  невроповеденчески , невропат­  
ологични  и неврохимични  или електрофизиологични  
находки , ако има такива ; 
— данни  за абсорбцията  и метаболизма , ако има такива ; 
— статистическа  обработка  на резултатите , ако е подходящо . 
Обсъждане  на резултатите ; 
— информация  за дозата , при която  има отговор ; 
— връзка  на някои  други  токсични  ефекти  със заключението  за 
невротоксичния  потенциал  на изпитваното  вещество ; 
— ниво , при което  не се наблюдава  вреден  ефект . 
Заключения : 
— препоръчва  се да се представи  специфично  изявление  
относно  цялостната  невротоксикология  на изпитваното  
вещество . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) OECD Giudance Document on Neurotoxicity Testing Stra ­
tegies and Test Methods. OECD, Paris, In Preparation.  
(2) Test Guideline for a Developmental Neurotoxicity Study, 
OECD Guidelines for the Testing of Chemicals. In preparation.  
(3) World Health Organization (WHO) (1986). Environmental 
Health Criteria document 60: Principles and Methods for the Assessment of Neurotoxicity associated with Exposure to 
Chemicals.
 
(4) Spencer, P. S. and Schaumburg, H. H. (1980). Experimental 
and Clinical Neurotoxicology. Eds. Spencer, P. S. and Scha ­
umburg, H. H. eds. Williams and Wilkins, Baltimore/London.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 634
 
(5) Tupper, D.E. and Wallace, R. B. (1980). Utility of the Neuro ­
logical Examination in Rats. Acta Neurobiol. Exp., 40, 
999—1003.  
(6) Gad, S. C. (1982). A Neuromuscular Screen for Use in 
Industrial Toxicology. J. Toxicol. Environ. Health, 9, 
691—704.  
(7) Moser, V. C., McDaniel, K. M. and Phillips, P. M. (1991). Rat 
Strain and Stock Comparisons Using a Functional Observa ­
tional Battery: Baseline Values and Effects of amitraz. Toxic. 
Appl. Pharmacol., 108, 267—283.  
(8) Meyer, O. A., Tilson, H. A., Byrd, W. C. and Riley, M. T. 
(1979). A Method for the Routine Assessment of Fore and Hind-limb Grip Strength of Rats and Mice. Neurobehav. 
Toxicol., 1, 233—236.
 
(9) Crofton, K. M., Haward, J. L., Moser, V. C., Gill, M. W., 
Reirer, L. W., Tilson, H. A. and MacPhail, R. C. (1991) Inter ­
laboratory Comparison of Motor Activity Experiments: Impli ­
cation for Neurotoxicological Assessments. Neurotoxicol. 
Teratol., 13, 599—609.  
(10) Tilson, H. A., and Mitchell, C. L. eds. (1992). Neurotoxi ­
cology Target Organ Toxicology Series. Raven Press, New 
York.  
(11) Chang, L. W., ed. (1995). Principles of Neurotoxicology. 
Marcel Dekker, New York.  
(12) Broxup, B. (1991). Neuopathology as a screen for Neuroto ­
xicity Assessment. J. Amer. Coll. Toxicol, 10, 689—695.  
(13) Moser, V. C., Anthony, D. C., Sette, W. F. and MacPhail, R. C. 
(1992). Comparison of Subchronic Neurotoxicity of 2-Hydro ­
xyethyl Acrylate and Acrylamide in Rats. Fund. Appl.Toxicol, 
18, 343—352.  
(14) O'Callaghan, J. P. (1988). Neurotypic and Gliotypic Proteins as 
Biochemical Markers of Neurotoxicity. Eurotoxicol. Teratol., 
10, 445—452.  
(15) O'Callaghan J.P. and Miller, D. B. (1988). Acute Exposure of 
the Neonatal Rat to Triethyltin Results in Persistent Changes in Neurotypic and Gliotypic Proteins. J. Pharmacol. Exp. Ther., 
244, 368—378.
 
(16) Fox. D. A., Lowndes, H. E. and Birkamper, G. G. (1982). 
Electrophysiological Techniques in Neurotoxicology. In: 
Nervous System Toxicology. Mitchell, C. L. ed. Raven 
Press, New York, pp 299—335.  
(17) Johnson, B. L. (1980). Electrophysiological Methods in neuro ­
toxicity Testing. In: Experimental and Clinical Neurotoxi ­
cology. Spencer, P. S. and Schaumburg, H. H. eds., 
Williams and Wilkins Co., Baltimore/London, pp. 726—742.  
(18) Bancroft, J. D. and Steven A. (1990). Theory and Pratice of 
Histological Techniques. Chapter 17, Neuropathological Tech ­
niques. Lowe, James and Cox, Gordon eds. Churchill Livin ­
gstone.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 635
 
Таблица  1 
Минимален  брой  животни  в група , когато  невротоксикологично  изследване  се провежда  отделно  или 
комбинирано  с други  изследвания  
НЕВРОТОКСИКОЛОГИЧНО  ИЗСЛЕДВАНЕ , ПРОВЕДЕНО  КАТО : 
отделно  изследване  комбинирано  
изследване  с 28- 
дневно  изследване  комбинирано  
изследване  с 90- 
дневно  изследване  комбинирано  
изследване  с 
изследване  за 
хронична  токсичност  
Общ  брой  животни  в 
група  10 мъжки  и 10 
женски  10 мъжки  и 10 
женски  15 мъжки  и 15 
женски  25 мъжки  и 25 
женски  
Брой  на животните , 
избрани  за функционално  
изследване , включващо  
подробни  клинични  набл­  
юдения  10 мъжки  и 10 
женски  10 мъжки  и 10 
женски  10 мъжки  и 10 
женски  10 мъжки  и 10 
женски  
Брой  на животните , 
избрани  за перфузия  in 
situ и за неврохистопат­  
ология  5 мъжки  и 5 
женски  5 мъжки  и 5 
женски  5 мъжки  и 5 
женски  5 мъжки  и 5 
женски  
Брой  на животните , 
избрани  за наблюдения  
при повтарящи  се дози / 
субхронична /хронична  
токсичност , хематология , 
клинична  биохимия , хист­  
опатология  и други , както  
е указано  в съответните  
ръководства  5 мъжки  и 5 
женски  10 мъжки  † и 10 
женски  † 20 мъжки  † и 20 
женски  † 
Допълнителни  набл­  
юдения , където  е 
подходящо  5 мъжки  и 5 
женски  
† Включва  пет животни , избрани  за функционални  изследвания  и подробни  клинични  наблюдения  като част от неврот­  
оксичното  изследване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 636
 
Таблица  2 
Честота  на клиничните  наблюдения  и функционалните  изследвания  
Вид наблюдения  Продължителност  на изследването  
остро  28- дневно  90- дневно  хронично  
При всички  
животни  Общо  здраво­  
словно  
състояние  Ежедневно  Ежедневно  Ежедневно  Ежедневно  
Смъртност / 
заболеваемост  Два пъти  
дневно  Два пъти  
дневно  Два пъти  
дневно  Два пъти  дневно  
При животни , 
избрани  за 
функционални  
наблюдения  Подробни  
клинични  набл­  
юдения  — преди  
първата  
експозиция  
— през 8 часа 
от дозиране  
при 
оценяваното  
време  за 
слаб  ефект  
— на 7-ия и 
14-ия ден 
след  
дозирането  — преди  
първата  
експозиция  
— след  това 
веднъж  
седмично  — преди  
първата  
експозиция  
— веднъж  по 
време  на 
първата  или 
втората  
седмица  от 
експоз­  
ицията  
— ежемесечно  
след  това — преди  
първата  
експозиция  
— веднъж  в 
края  на 
първия  месец  
от експоз­  
ицията  
— на всеки  три 
месеца  след  
това 
Функционални  
изследвания  — преди  
първата  
експозиция  
— през 8 часа 
от дозиране  
при 
оценяваното  
време  за 
слаб  ефект  
— на 7-ия и 
14-ия ден 
след  
дозирането  — преди  
първата  
експозиция  
— през 
четвъртата  
седмица  на 
третиране , 
колкото  се 
може  по- 
близо  до 
края  на 
периода  на 
експоз­  
ицията  — преди  
първата  
експозиция  
— веднъж  по 
време  на 
първата  или 
втората  
седмица  от 
експоз­  
ицията  
— ежемесечно  
след  това — преди  
първата  
експозиция  
— в края  на 
първия  месец  
от експоз­  
ицията  
— на всеки  три 
месеца  след  
това ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 637
 
Б.44. КОЖНА  АБСОРБЦИЯ : IN VIVO  МЕТОД  
1. МЕТОД  
Този  метод  на изпитване  е еквивалентен  на OECD TG 427 
(2004).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Излагането  на много  от химичните  вещества  става  предимно  
през кожата , докато  по-голямата  част от токсикологичните  
изследвания , направени  върху  лабораторни  животни , използват  
оралния  път на прилагане . Изследването  за перкутанна  
абсорбция  in vivo,  описано  в тези насоки , осигурява  връзката , 
необходима  за екстраполиране  на орални  изследвания , при 
правенето  на оценки  за безопасност  след  кожно  излагане . 
Едно  вещество  следва  да премине  през голям  брой  слоеве  на 
кожата , преди  да достигне  до обращението . Слоят , който  
определя  степента  на преминаване  за повечето  вещества , е 
stratum corneum,  състоящ  се от мъртви  клетки . Проницаемостта  
през кожата  зависи  както  от липофилността  на веществото , така 
и от дебелината  на външния  слой  на епидермиса , наред  с 
фактори  като молекулно  тегло  и концентрация  на веществото . 
Като  цяло , кожата  на плъховете  и зайците  е по-проницаема , 
отколкото  тази на хората , докато  проницаемостта  на кожата  на 
морските  свинчета  и маймуните  е по-сходна  с човешката . 
Методите  на измерване  на перкутанна  абсорбция  могат  да се 
разделят  на две категории : in vivo  и in vitro.  Методът  in vivo  
може  да осигурява  добра  информация  в различни  видове  
лабораторни  животни  за кожната  абсорбция . Неотдавна  бяха  
разработени  методите  in vitro.  Те използват  транспорта  през 
напълно  или частично  дебела  животинска  или човешка  кожа  
до резервоар  с флуид . Методът  in vitro  e описан  като отделен  
метод  на изпитване  (1). Препоръчва  се да се направи  конс­  
ултация  с документа  за насоки  на OECD за провеждане  на 
изследвания  за кожна  абсорбция  (2), за да се подпомогне  
изборът  на най-подходящ  метод  при всеки  отделен  случай , тъй 
като той дава повече  подробности  за това, кога е подходящ  
методът  in vivo  и кога — методът  in vitro.  
Методът  in vivo,  който  се описва  в този метод , позволява  
определянето  на проникването  на изпитваното  вещество  през 
кожата  във вътрешните  органи . Техниката  е широко  използвана  
от много  години  насам  (3)(4)(5)(6)(7). Въпреки  че изследванията  
in vitro  на перкутанна  абсорбция  могат  в много  случаи  да са 
подходящи , може  да има случаи , в които  единствено  изследване  
in vivo  може  да осигури  необходимите  данни . 
Предимствата  на метода  in vivo  са, че той използва  физио­  
логично  и метаболитно  незасегната  система , използва  видове , 
които  се използват  за много  от изследванията  за токсичност , и 
може  да се модифицира  за прилагане  при други  видове . Недост­  
атъците  са използването  на живи  животни , нуждата  от радио­  
активно  белязан  материал , за да се подпомогне  получаването  на 
надеждни  резултати , трудности  при определяне  на ранната  фаза  
на абсорбция  и разликите  в проницаемостта  на предпочетения  
вид (плъх ) и човешката  кожа . Животинската  кожа  като цяло  е 
по-проницаема  и поради  това човешката  перкутанна  абсорбция  
може  да се надцени  (6)(8)(9). Каустици /корозивни  вещества  не 
бива  да се тестват  върху  живи  животни . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 638
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Неабсорбирана  доза : представлява  дозата , измита  от кожната  
повърхност  след  излагане , и всяка  доза, която  е налице  върху  
неоклузивната  превръзка , включително  всяка  доза, за която  бъде  
доказано , че се е изпарила  от кожата  по време  на излагане . 
Абсорбирана  доза  (in vivo ): състои  се от дозата , налична  в 
урината , от измиване  на клетката , изпражненията , издишания  
въздух  (ако е измерен ), кръвта , тъканите  (ако са събирани ) и 
останалия  труп  след  отстраняване  на кожата  от мястото  на прил­  
агане . 
Абсорбируема  доза : представлява  дозата , която  е останала  по 
или в кожата  след  измиване . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество , за предпочитане  е то да е радиоактивно  
белязано , се нанася  върху  остриганата  кожа  на животните  при 
едно  или повече  подходящи  нива  на дозиране , под формата  на 
представителен  препарат  за употреба . Изпитваният  препарат  се 
оставя  в контакт  с кожата  за определен  период  от време  под 
подходяща  превръзка  (неоклузивна , полуоклузивна  или 
оклузивна ), за да се предотврати  поглъщането  на изпитвания  
препарат  от животното . В края  на времето  за излагане  
превръзката  се отстранява , кожата  се почиства  с подходящ  
измиващ  агент , като превръзката  и измиващите  материали  се 
запазват  за анализ , и се поставя  нова  превръзка . Животните  се 
отглеждат  преди , по време  и след  периода  на излагане  в 
индивидуални  метаболитни  клетки , като екскретите  и 
издишаният  въздух  през тези периоди  се събират  за анализ . 
Събирането  на издишания  въздух  може  да се пропусне , когато  
има достатъчно  информация , че не се образува  почти  никакъв  
или никакъв  летлив  радиоактивен  метаболит . Всяко  изследване  
обикновено  включва  няколко  групи  животни , които  се излагат  
на препарата  за изпитване . Една  група  ще бъде  убита  в края  на 
периода  на излагане . Другите  групи  ще бъдат  убити  след  това на 
определени  интервали  от време  (2). В края  на периода , 
определен  за взимане  на проби , се убиват  останалите  животни , 
взима  се кръв  за анализ , мястото  на прилагане  се отстранява  за 
анализ , а трупът  се анализира  за неекскретиран  материал . 
Пробите  се изпитват  със съответните  методи  и се установява  
степента  на перкутанна  абсорбция  (6) (8) (9).  
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.4.1.  Избор  на животинския  вид 
Плъхът  е най-често  използваният  вид, но могат  да се използват  
и породите  без козина  или тези, които  имат  степен  на кожна  
абсорбция , сходна  с тази при хората  (3) (6) (7) (8) (9). Следва  да 
се използват  млади , зрели  и здрави  животни  от един  и същи  пол 
(като по подразбиране  се използва  мъжкият  пол) на широко  
използвани  лабораторни  породи . В началото  на изследването  
разликите  в теглото  на използваните  животни  не трябва  да 
надвишават  ± 20 % от средното  тегло . За пример , подходящи  
са мъжки  плъхове  с тегло  200—250 g, особено  в горната  част на 
тези граници . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 639
 
1.4.2.  Брой  и пол на животните  
За всеки  препарат  на изпитване  и за всяка  предварително  
определена  продължителност  следва  да се използва  група  от 
поне  четири  животни  от един  и същи  пол. Всяка  група  
животни  ще бъде  убита  след  различен  интервал  от време , 
например  в края  на периода  на експониране  (обикновено  от 6 
до 24 часа) и последващи  случаи  (например  48 и 72 часа). Ако 
има данни , показващи  съществени  разлики  в дермалната  токс­  
ичност  между  женски  и мъжки , следва  да се избере  по-чувствит­  
елният  пол. Ако няма  такива  данни , може  да се използва  който  и 
да е пол. 
1.4.3.  Условия  на отглеждане  и хранене  
Температурата  в експерименталното  помещение  с животните  
трябва  да бъде  22  o С (± 3  o С). Въпреки  че относителната  
влажност  трябва  да е поне  30 % и за предпочитане  да не 
превишава  70 %, освен  по време  на почистване  на помещението , 
целта  следва  да е 50—60 %. Осветлението  трябва  да бъде  
изкуствено , като последователността  е 12 часа светлина , 12 
часа тъмнина . За хранене  могат  да се използват  конвенцион­  
алните  лабораторни  храни , които  да бъдат  напълно  достъпни  
заедно  с неограничено  количество  питейна  вода . По време  на 
изследването  и за предпочитане  също  по време  на аклиматиз­  
ацията  животните  трябва  да се държат  поединично  в мета­  
болитни  клетки . Тъй като разпръсването  на храна  и вода  би 
компроментирало  резултатите , възможността  това да се случи  
трябва  да бъде  сведена  до минимум . 
1.4.4.  Подготовка  на животните  
Животните  се бележат , за могат  да бъдат  индивидуално  идент­  
ифицирани , и се държат  в клетките  си за период  поне  от пет дни 
преди  началото  на изследването , за да могат  да се аклим­  
атизират  към лабораторните  условия . 
След  периода  на аклиматизация  и приблизително  24 часа преди  
прилагането  на изпитваното  вещество , участък  от гърба  в областта  
на раменете  на всяко  животно  се остригва  до кожа . Свойствата  на 
проникване  на увредена  кожа  са различни  от тези на неувредена  
кожа  и трябва  да се положат  грижи  да се избегне  нараняване  на 
кожата . След  остригването  и приблизително  24 часа преди  
изпитваното  вещество  да се нанесе  върху  кожата  (вж. също  
точка  1.4.7), кожната  повърхност  трябва  да се избърше  с ацетон , 
за да се отстрани  себумът . Не се препоръчва  допълнително  
измиване  със сапун  и вода , тъй като останалият  сапун  може  да 
насърчи  абсорбцията  на изпитваното  вещество . Площта  трябва  да 
бъде  достатъчно  голяма , за да позволи  надеждно  изчисляване  на 
абсорбираното  количество  изпитвано  вещество  на квадратен  сант­  
иметър  кожа , за предпочитане  поне  10 cm  2 . Тази  площ  се постига  
при плъхове  с телесно  тегло  200—250 g. След  подготовката  
животните  се връщат  в метаболитните  клетки . 
1.4.5.  Изпитвано  вещество  
Изпитваното  вещество  е продуктът , чиито  свойства  на прон­  
икване  трябва  да се изследват . В идеалния  случай  изпитваното  
вещество  трябва  да бъде  радиоактивно  белязано . 
1.4.6.  Препарат  за изпитване  
Препаратът  с изпитваното  вещество  (напр . чист , разтворен  или 
приготвен  по формула  материал , съдържащ  изпитваното  
вещество , който  се прилага  върху  кожата ) трябва  да бъде  
същият  (или реалистичен  заместител ) като този, на който  могат  
да бъдат  изложени  хора  или други  прицелни  видове . Всякакво  
отклонение  от препарата  за употреба  трябва  да бъде  оправдано . 
Когато  е необходимо , изпитваното  вещество  е в разтвор  или в 
суспензия  в подходяща  среда . За среди , различни  от водата , 
трябва  да са познати  характеристиките  на абсорбция  и потенци­  
алното  взаимодействие  с изпитваното  вещество . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 640
 
1.4.7.  Прилагане  върху  кожата  
Определя  се мястото  на прилагане  с определена  площ  върху  
кожната  повърхност . Върху  мястото  равномерно  се нанася  
предварително  определено  количество  от изпитвания  препарат . 
Това  количество  би трябвало  да отговаря  на потенциално  
човешко  излагане , обикновено  1—5 mg/cm  2 за твърди  
вещества  или до 10 μl/cm  2 за течности . Всякакви  други  
количества  трябва  да бъдат  оправдани  с очакваните  условия  на 
използване , целите  на изследването  или физичните  
характеристики  на изпитвания  препарат . След  прилагането  
третираното  място  трябва  да се предпази  от търкане . Пример  
за такова  типично  приспособление  е показан  на фигура  1. Обик­  
новено  мястото  на прилагане  се предпазва  чрез неоклузивна  
превръзка  (например  пропусклив  компрес  от найлонова  марля ). 
Обаче  при безкрайно  дълго  прилагане  мястото  на прилагане  
трябва  да бъде  направено  оклузивно . В случай  че изпаряването  
на полулетливи  изпитвани  вещества  намалява  степента  на 
събиране  на изпитваното  вещество  до неприемливи  стойности  
(вж. също  точка  1.4.10, първа  алинея ), е необходимо  изпареното  
вещество  да се улови  във въглен  филтър , който  покрива  прис­  
пособлението  на прилагане  (вж. фигура  1). Важно  е никое  прис­  
пособление  да не уврежда  кожата , нито  пък да реагира  със или 
да абсорбира  изпитвания  препарат . Животните  се връщат  в 
единични  метаболитни  клетки , за да се събере  екскретът  им. 
1.4.8.  Продължителност  на експозиция  и вземане  на проби  
Продължителността  на излагане  е интервалът  от време  между  
прилагането  и отстраняването  на изпитвания  препарат  от кожата  
чрез измиване . Трябва  да се използва  подходящ  период  на 
излагане  (обикновено  от 6 до 24 часа), който  да се основава  
на очакваната  продължителност  на излагане  на хора . След  
периода  на експозиция  животните  се гледат  в метаболитните  
клетки  до планирания  край . Животните  следва  редовно  да се 
наблюдават  за признаци  на токсичност /анормални  реакции  на 
равни  интервали  през цялото  време  на изследването . В края  на 
излагането  третираната  кожа  трябва  да се прегледа  за видими  
признаци  на раздразнение . 
Метаболитните  клетки  трябва  да позволяват  отделното  събиране  
на урина  и изпражнения  по време  на цялото  изследване . Те 
трябва  да позволяват  също  и събирането  на 14 С-въглероден  
двуокис  и летливите  14 С-въглеродни  съединения , които  следва  
да се анализират , ако се произвеждат  в големи  количества  
(> 5 %). Урината , изпражненията  и уловените  флуиди  
(като  14 С-въглероден  двуокис  и 14 С-въглеродни  съединения ) 
трябва  да бъдат  събирани  индивидуално  от всяка  група  във 
времето  за взимане  на проби . Ако има достатъчно  информация , 
че се е образувало  слабо  летливо  или нелетливо  радиоактивно  
метаболитно  вещество , може  да се използват  отворени  клетки . 
Екскретите  се събират  по време  на периода  на експозиция , до 24 
часа след  първоначалния  контакт  с кожата  и след  това 
ежедневно  до края  на експеримента . Обикновено  е достатъчно  
събирането  на екскрети  на три интервала , но предвижданото  
предназначение  на изпитвания  препарат  или съществуващи  
данни  за кинетиката  може  да изискват  по-подходящи  или 
допълнителни  точки  във времето , които  да бъдат  изследвани . 
В края  на периода  на излагане  защитното  приспособление  се 
отстранява  от всяко  животно  и се запазва  поотделно  за анализ . 
Третираната  кожа  на всички  животни  трябва  да се измие  поне  3 
пъти  с измиващ  агент , като се използват  подходящи  тампони . 
Трябва  да се внимава  да не се замърсят  други  части  на тялото . 
Измиващият  агент  трябва  да е представител  на нормалната  
хигиенна  практика , напр . сапунена  вода . Накрая  кожата  трябва  
да се подсуши . Всички  тампони  и други  средства  за почистване  
трябва  да се запазят  за анализ . Трябва  да се сложи  нова  
превръзка , за да се защити  третираното  място  на онези  
животни , които  образуват  по-късни  групи , преди  да се 
завърнат  в индивидуалните  клетки . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 641
 
1.4.9.  Крайни  процедури  
За всяка  група  индивидуалните  животни  се убиват  в 
определеното  време  и се взима  кръв  за изследване . Защитното  
приспособление  или превръзка  се сваля  за анализ . От всяко  
животно  кожата  от мястото  на прилагане  и подобна  площ  
нетретирана  остригана  кожа  се отстраняват  за отделен  анализ . 
Мястото  на прилагане  може  да се фрагментира , за да се отдели  
stratum corneum  от лежащия  под него  епидермис  и да се осигури  
повече  информация  за разположението  на изпитваното  
вещество . Определянето  на това разположение  за даден  период  
след  периода  на излагане  трябва  да даде  някаква  индикация  за 
съдбата  в stratum corneum  на което  и да е вещество  на 
изпитване . За да се улесни  разделянето  на фракции  (след  оконч­  
ателното  измиване  на кожата  и убиването  на животното ), се 
сваля  всяко  защитно  средство . Кожата  на мястото  на прилагане , 
заедно  с пръстен  кожа  около  него , се изрязва  от плъх  и се 
забожда  върху  равна  повърхност . Върху  кожата  с леко  
натискане  се прилага  парче  лепенка  и след  това се отстранява  
заедно  с част от stratum corneum.  Това  се повтаря  с още парчета  
лепенка , докато  лепенката  престане  да се залепва  върху  
повърхността  на кожата  и stratum corneum  е отстранен  
напълно . За всяко  животно  всички  парчета  лепенка  могат  да 
се поставят  в един  контейнер , в който  се добавя  разтворител  
на тъкани , за да разтвори  stratum corneum.  Всяка  потенциална  
целева  тъкан  може  да бъде  отстранена  за отделно  измерване , 
преди  остатъчният  труп  да се анализира  за абсорбираната  доза 
в трупа . Труповете  на отделните  животни  трябва  да се запазят  за 
анализ . Обикновено  е достатъчен  анализът  на общото  
съдържание . Органите  обект  на внимание  могат  да се 
отстранят  за отделен  анализ  (ако това е показано  от други  
изследвания ). Урината , която  се намира  в пикочния  мехур  в 
момента  на планираното  убиване , трябва  да се добави  към 
събраната  преди  това урина . След  събирането  на екскрети  от 
метаболитните  клетки  в момента  на убиването , клетките  и врат­  
ичките  им трябва  да се измият  с подходящ  разтворител . Друго  
евентуално  замърсено  оборудване  също  трябва  да се анализира . 
1.4.10.  Анализ  
При всички  изследвания  трябва  да се постигне  адекватно  
събиране  (т.е. средно  100 ± 10 % от радиоактивността ). 
Събирането  извън  този обхват  трябва  да бъде  обосновано . 
Количеството  на приложената  доза за всяка  проба  трябва  да се 
анализира  с помощта  на подходящи  валидирани  процедури . 
Статистическият  анализ  трябва  да включва  измерване  на 
отклонението  на повторните  изпитвания  за всяко  прилагане . 
2. ДАННИ  
Следните  измервания  трябва  да бъдат  направени  за всяко  
животно  в момента  на всяко  вземане  на проба  за изпитваното  
вещество  и/или метаболити . В допълнение  към индивидуалните  
данни , данните , групирани  според  времето  на вземане  на проби , 
трябва  да се докладват  като средни  стойности . 
— количество , свързано  със защитните  средства ; 
— количество , което  може  да се събере  от кожата ; 
— количество  във/по кожата , което  не може  да се измие  от нея; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 642
 
— количество  в кръвната  проба ; 
— количество  в екскрета  и издишания  въздух  (ако има такива ); 
— количество , оставащо  в трупа  и в органите , отстранени  за 
отделен  анализ . 
Количеството  изпитвано  вещество  и/или метаболити  в екскрета , 
издишания  въздух , кръвта  и трупа  ще позволят  да бъде  
определено  общото  количество , абсорбирано  във всяка  точка  
от времето . Може  да се направи  и изчисление  на количеството  
изпитвано  вещество , абсорбирано  на квадратен  сантиметър  
кожа , изложена  на изпитваното  вещество  по време  на периода  
на излагане . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Докладът  от изпитването  трябва  да съдържа  изискванията , 
определени  в протокола , включително  обосновка  за 
използваната  система  на изпитване , и трябва  да се включва  
следното : 
Изпитвано  вещество : 
— идентификационни  данни  (например  CAS-номер , ако има; 
източник ; чистота  (радиохимична  чистота ); известни  
примеси ; номер  на партида ), 
— физична  природа , физикохимични  свойства  (например  рН, 
летливост , разтворимост , стабилност , молекулно  тегло  и log 
P ow ). 
Препарат  за изпитване : 
— формула  и обосновка  на употребата ; 
— подробности  за препарата  за изпитване , приложено  колич­  
ество , достигната  концентрация , транспортна  среда , 
стабилност  и хомогенност . 
Лабораторно  животно : 
— използван  вид/порода , 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— източник  на животните , условия  на живот , хранене  и т.н., 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на теста . 
Условия  на теста : 
— подробности  на администрирането  на препарата  на 
изпитване  (място  на прилагане , методи  на изпитване , 
оклузия /без оклузия , обем , екстракция , откриване ); 
— подробности  за качеството  на храната  и водата . 
Резултати : 
— всякакви  признаци  на токсичност , 
— таблично  представени  данни  за абсорбцията  (изразени  като 
степен , количество  или процент ), ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 643
 
— всичко  обратно  събрано  от експеримента , 
— тълкуване  на резултатите , сравнение  с други  налични  данни  
за перкутанна  абсорбция  на изпитваното  съединение . 
Обсъждане  на резултатите . 
Изводи . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Testing Method B.45. Skin Absorption:  In vitro  Method.  
(2) (2) ОИСР , 2002. Guidance Document for the Conduct of Skin 
Absorption Studies. OECD, Paris.  
(3) ECETOC, 1993. Percutaneous Absorption. European Centre for 
Ecotoxicology and Toxicology of Chemicals, Monograph 
No. 20.  
(4) Zendzian R. P., 1989. Skin Penetration Method suggested for 
Environmental Protection Agency Requirements.  J. Am. Coll. 
Toxicol.  8(5), 829—835.  
(5) Kemppainen B. W., Reifenrath W. G., 1990. Methods for skin 
absorption. CRC Press Boca Raton, FL, USA.  
(6) EPA, 1992. Dermal Exposure Assessment: Principles and 
Applications. Exposure Assessment Group, Office of Health 
and Environmental Assessment.  
(7) EPA, 1998. Health Effects Test Guidelines, OPPTS 870-7600, 
Dermal Penetration. Office of Prevention, Pedsticides and Toxic 
Substances.  
(8) Bronaugh R. L., Wester R. C., Bucks D., Maibach H. I. and 
Sarason R. (1990)  In vivo  percutaneous absorption of fragrance 
ingredients in reshus monkeys and humans.  Fd. Chem. Toxic.  
28, 369—373.  
(9) Feldman R. J. and Maibach H. I., 1970. Absorption of some 
organic compounds through the skin in man.  J. Invest Dermatol.  
54, 399—404.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 644
 
Фигура  1 
Пример  за класическо  средство , използвано  за отделяне  и предпазване  на 
мястото  на кожно  прилагане  при изследвания  in vivo  на перкутанната  
абсорбция
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 645
 
Б.45. КОЖНА  АБСОРБЦИЯ : IN VITRO  МЕТОД  
1. МЕТОД  
Този  метод  на изпитване  е еквивалентен  на ОИСР  TG 428 
(2004).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  е разработен , за да се получи  информация  за 
абсорбцията  на изпитваното  вещество , приложено  върху  
изрязана  кожа . Той може  или да се комбинира  с метода  за 
кожна  абсорбция : метод  in vivo  (1), или да се прилага  самосто­  
ятелно . Препоръчва  се да се направи  консултация  с Ръково­  
дството  за провеждане  на изследвания  за кожна  абсорбция  на 
ОИСР  (2), за да може  да се подпомогне  създаването  на 
изследвания , основани  на този метод . Ръководството  е 
изготвено , за да се улесни  изборът  на подходящия  метод  in 
vitro  за използване  при конкретните  обстоятелства  и да се 
обезпечи  надеждност  на резултатите , получени  с помощта  на 
този метод . 
Методите  за измерване  на кожната  абсорбция  и преминаването  
през кожата  могат  да се разделят  на две категории : in vivo  и in 
vitro.  Методите  in vivo  за кожна  абсорбция  са добре  установени  
и осигуряват  фармакокинетична  информация  за голям  брой  
животински  видове . Методът  in vivo  е описан  отделно  в друг  
метод  на изпитване  (1). Методите  in vitro  също  се използват  
отдавна  за измерване  на кожната  абсорбция . Въпреки  че не са 
правени  официални  валидиращи  изследвания  на методите  in 
vitro,  обхванати  от този метод  на изпитване , експертите  от 
ОИСР  се съгласиха  през 1999 г., че има достатъчно  данни , на 
които  е направена  оценка  и които  са в подкрепа  на метода  in 
vitro  (3). Повече  подробности , които  подкрепят  това, включ­  
ително  значителен  брой  преки  сравнения  на методи  in vivo  и 
in vitro,  са дадени  в ръководството  (2). Съществуват  голям  
брой  монографии , които  разглеждат  тази тема  и дават  
подробна  информация  за използването  на in vitro  метод  (4) (5) 
(6) (7) (8) (9) (10) (11) (12). Методите  in vitro  измерват  
дифузията  на химикалите  вътре  и през кожата  към резервоар  с 
флуид  и могат  да използват  нежизнеспособна  кожа  за измерване  
само  на дифузията , или свежа , метаболитно  активна  кожа  за 
едновременното  измерване  на дифузията  и кожния  метаболизъм . 
Подобни  методи  имат  приложение  особено  като средство  за 
сравнение  на усвояването  на веществата  при различни  
формули  на приготвяне , във и през кожата , и също  могат  да 
осигурят  полезни  модели  за оценка  на перкутанната  абсорбция  
при хората . 
Методът  in vitro  не може  да се прилага  за всички  ситуации  и 
химични  класове . Може  да се използва  методът  за изпитване  in 
vitro  за първоначална  качествена  оценка  на кожно  проникване . В 
някои  случаи  може  да се наложи  то да бъде  последвано  от 
данни , получени  in vivo.  Трябва  да се направи  справка  с ръко­  
водството  (2) за по-нататъшно  разработване  на случаи , при 
които  in vitro  методът  би бил подходящ . Допълнителна  
подробна  информация , за да се подпомогне  вземането  на 
решение , е дадена  в препратка  (3). 
Този  метод  показва  общите  принципи  за измерване  на 
дермалната  абсорбция  и преминаване  на изпитваното  
вещество , като се използва  изрязана  кожа . Може  да се 
използва  кожа  на различни  видове  бозайници , включително  и 
хора . Свойствата  на проницаемост  на кожата  се запазват  и 
след  изрязването  от тялото , тъй като основната  бариера  пред  
дифузията  е неживият  stratum corneum;  активен  транспорт  на 
химични  вещества  през кожата  не е наблюдаван . Доказано  е, 
че кожата  има способността  да метаболизира  някои  химикали  
по време  на перкутанна  абсорбция  (6), но този процес  не 
ограничава  степента  по отношение  на действително  
абсорбираната  доза, макар  да може  да повлияе  на природата  
на материала , който  прониква  в кръвообращението . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 646
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Неабсорбирана  доза : представлява  дозата , измита  от 
повърхността  на кожата  след  излагане , и всяка  друга  доза, 
която  е налице  върху  неоклузивната  превръзка , включително  
всяка  доза, за която  може  да се покаже , че се е изпарила  от 
кожата  по време  на излагането . 
Абсорбирана  доза  (in vitro ): количеството  изпитвано  вещество , 
достигнало  до рецепторния  флуид  или до циркулацията  в 
системата  в рамките  на определен  период  от време . 
Абсорбируема  доза  (in vitro ): представлява  дозата , която  е 
налице  върху  или в кожата  след  измиване . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Изпитваното  вещество , което  може  да бъде  радиоактивно  
белязано , се прилага  върху  повърхността  на кожната  проба , 
която  разделя  двете  камери  на дифузионната  клетка . Веществото  
остава  върху  кожата  за определено  време  при определени  
условия , преди  да бъде  отстранено  с помощта  на подходяща  
процедура  за измиване . От рецепторния  флуид  се взимат  
проби  в определени  моменти  по време  на експеримента  и се 
анализират  за изпитваното  вещество  и/или метаболити . 
Когато  се използват  метаболитноактивни  системи , метаболитите  
на изпитваното  вещество  могат  да се анализират  с помощта  на 
подходящи  методи . В края  на експеримента  се правят  колич­  
ествени  измервания  на разпределението  на изпитваното  
вещество  и метаболитите , когато  това е необходимо . 
Като  се използват  подходящи  условия , които  са описани  в този 
метод  и в ръководството  (2), абсорбцията  на изпитваното  
вещество  по време  на определен  период  се измерва  чрез 
анализ  на рецепторния  флуид  и третираната  кожа . Изпитваното  
вещество , останало  в кожата , трябва  да се счита  за абсорбирано , 
освен  ако може  да бъде  показано , че абсорбцията  може  да се 
определя  само  със стойностите  в рецепторния  флуид . Анализът  
на другите  компоненти  (материала , измит  от кожата , и 
останалия  вътре  в кожните  слоеве ) позволява  по-нататъшна  
оценка  на данните , включително  общото  отлагане  на 
изпитваното  вещество  и процента  на събиране . 
За да се покаже  функционирането  и надеждността  на системата  
за изпитване , лабораторията , в която  се провежда  изпитването , 
трябва  да разполага  с резултати  за съответните  референтни  
вещества , които  да съответстват  на публикуваната  литература  
за използвания  метод . Това  изискване  може  да се изпълни , 
като се изпита  подходящо  референтно  вещество  (за предп­  
очитане  такова  с липофилност , близка  до тази на изпитваното  
вещество ) едновременно  с изпитваното  вещество  или като се 
осигурят  подходящи  исторически  данни  за ред референтни  
вещества  с различна  липофилност  (например  кафеин , бензоена  
киселина , тестостерон ). 
1.4. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.4.1.  Дифузна  клетка  
Дифузната  клетка  се състои  от донорна  камера  и рецепторна  
камера , между  които  е разположена  кожата  (пример  на 
типична  концепция  е даден  на фигура  1). Клетката  трябва  да 
осигурява  добро  „запечатване “ около  кожата , да дава 
възможност  за лесно  вземане  на проби  и добро  смесване  на 
рецепторния  разтвор  в контакт  с долната  страна  на кожата , 
както  и добър  температурен  контрол  на клетката  и нейното  
съдържание . Може  да се използват  както  статични , така и 
проточни  дифузни  клетки . Обикновено  донорните  камери  се 
оставят  неоклузивни  по време  на излагане  на определена  
крайна  доза от изпитвания  препарат . Обаче  при безкрайни  прил­  
агания  и някои  сценарии  с крайни  дози  донорните  камери  може  
да бъдат  оклузивни . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 647
 
1.4.2.  Рецепторен  флуид  
За предпочитане  е да се използва  физиологично  съвместим  
рецепторен  флуид , въпреки  че могат  да се използват  и други , 
при условие  че това се обоснове . Трябва  да има описание  на 
точния  състав  на рецепторния  флуид . Трябва  да се покаже  необ­  
ходимата  разтворимост  на изпитваното  вещество  в рецепторния  
флуид , така че той да не действа  като бариера  за абсорбцията . 
Освен  това рецепторният  флуид  не бива  да уврежда  целостта  на 
изпитваната  кожа . При проточна  система  стойността  на потока  
не трябва  да препятства  дифузията  на изпитваното  вещество  в 
рецепторния  флуид . При система  със статична  клетка  флуидът  
трябва  непрекъснато  да се разбърква  и редовно  да се взимат  
проби . Ако се изследва  метаболизмът , рецепторният  флуид  
трябва  да поддържа  кожната  жизнеспособност  по време  на 
целия  експеримент . 
1.4.3.  Подготвяне  на кожата  
Може  да се използва  кожа  от човешки  и животински  източници . 
Отчита  се фактът , че употребата  на човешка  кожа  е предмет  на 
национални  и международни  етични  съображения  и условия . 
Макар  да се предпочита  жизнеспособна  кожа , нежизнеспособна  
също  може  да се използва , при условие  че може  да се покаже  
ненарушеността  на кожата . Приемливо  е използването  както  на 
епидермални  мембрани  (отделени  ензимно , чрез нагряване  или 
по химичен  начин ), така и на кожа  с разцепена  дебелина  
(типично  с дебелина  200—400 μm), приготвени  с дерматом . 
Може  да бъде  използвана  кожа  с цялата  си дебелина , но 
следва  да се избягва  прекомерната  дебелина  (са. > 1 mm), 
освен  ако нарочно  не се изисква  за определяне  на изпитваното  
вещество  в кожните  слоеве . Избирането  на животинския  вид, 
анатомичното  място  и техниките  за подготовка  на препаратите  
следва  да бъде  аргументирано . Изискват  се приемливи  данни  от 
минимум  четири  репликата  на изпитвано  вещество . 
1.4.4.  Ненарушеност  на подготвената  кожа  
От съществена  важност  е кожата  да бъде  правилно  подготвена . 
Неправилното  боравене  може  да доведе  до увреждане  на stratum 
corneum  и затова  следва  да се провери  ненарушеността  на подг­  
отвената  кожа . Когато  се изследва  кожният  метаболизъм , прясно  
изрязаната  кожа  следва  да се използва  възможно  най-скоро  и 
при условия , за които  е известно , че поддържат  метаболитната  
активност . Като  обща  насока , прясно  изрязаната  кожа  следва  да 
се използва  до 24 часа, но приемливият  период  на съхранение  
може  да варира  в зависимост  от ензимната  система , която  
участва  в метаболизма , и от температурите  на съхранение  (13). 
Когато  кожните  препарати  са били  съхранявани  преди  
употребата  им, следва  да се покаже , че бариерната  им 
функция  не е нарушена . 
1.4.5.  Изпитвано  вещество  
Изпитвано  вещество  е веществото , чиито  характеристики  на 
проникване  следва  да се изучат . В идеалния  случай  изпитваното  
вещество  следва  да бъде  радиационно  маркирано . 
1.4.6.  Изпитван  препарат  
Препаратът  с изпитваното  вещество  (напр . чист , разтворен  или 
приготвен  по формула  материал , съдържащ  изпитваното  
вещество , който  се прилага  върху  кожата ) следва  да бъде  
същият  (или реалистичен  заместител ) като този, на който  хора  
или други  прицелни  видове  могат  да бъдат  изложени . Всякакво  
отклонение  от препарата  за употреба  следва  да бъде  оправдано . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 648
 
1.4.7.  Концентрации  на изпитваните  вещества  и формули  с тяхно  
участие  
Нормално  се използва  повече  от една  концентрация  на 
изпитваното  вещество , като се достигат  горните  граници  на 
потенциалното  излагане  на човека . Също  така следва  да се 
предвиди  изпитване  на разпространени  формули . 
1.4.8.  Прилагане  върху  кожата  
При нормални  условия  излагането  на човека  на химични  вещества  
обикновено  е при крайни  дози . Поради  това следва  да се използва  
прилагане , което  копира  човешко  излагане , обикновено  
1—5 mg/cm  2 от кожата  за твърдите  вещества  и до 10 μl/cm  2 за 
течностите . Количеството  следва  да бъде  обосновано  с очакваните  
условия  на употреба , целите  на изследването  или физичните  
характеристики  на изпитвания  препарат . Например  прилаганията  
към кожната  повърхност  могат  да бъдат  непрекъснати , когато  се 
прилагат  големи  количества  на единица  площ . 
1.4.9.  Температура  
Пасивната  дифузия  на химичните  вещества  (и поради  това тяхната  
абсорбция  от кожата ) се влияе  от температурата . Дифузната  
камера  и кожата  следва  да се поддържат  с постоянна  температура , 
близо  до нормалната  кожна  температура  от 32 ± 1  o С. Различните  
концепции  клетки  изискват  различни  температури , постигнати  
във водна  баня  или с нагревателен  блок , за да се гарантира , че 
рецепторът /кожата  е във физиологичната  си норма . Препоръчит­  
елната  влажност  е между  30 и 70 %.  
1.4.10.  Продължителност  на излагането  и вземане  на проби  
Излагането  на кожата  на изпитвания  препарат  може  да 
продължи  през целия  експеримент  или за по-кратки  периоди  
от време  (т.е. да копира  конкретен  тип човешко  излагане ). 
Кожата  следва  да се измие  от излишния  изпитван  препарат  с 
подходящ  измиващ  агент  и течността  от изплакването  следва  
да се събере  за анализ . Процедурата  по отстраняване  на 
изпитвания  препарат  зависи  от очакваните  условия  на 
употреба  и следва  да бъде  обоснована . Обикновено  се изисква  
период  от 24 часа за вземане  на проби , за да се позволи  адекв­  
атното  характеризиране  на абсорбционния  профил . Тъй като 
кожната  цялост  може  да започне  да се влошава  след  24-ия 
час, периодите  на вземане  на проби  обикновено  не следва  да 
превишават  24 часа. За изпитвани  вещества , които  проникват  
бързо  в кожата , може  да не е необходимо , но за онези  
вещества , които  проникват  бавно , може  да се изискват  по- 
дълги  периоди . Честотата  на вземане  на проби  от рецепторния  
флуид  би следвало  да позволи  абсорбционният  профил  на 
изпитваното  вещество  да се представи  графично . 
1.4.11.  Крайни  процедури  
Всички  компоненти  на системата  за изпитване  следва  да се 
анализират  и да се определи  събираемостта . Това  включва  
донорната  камера , течността  от изплакването  на кожната  
повърхност , кожата  за изпитване  и рецепторния  флуид /камера . 
В някои  случаи  за отделно  анализиране  кожата  може  да се 
раздели  на изложена  кожна  област , кожна  област  под фланеца  
на клетката  и на фракциите  на stratum corneum —  епидермис  и 
дермис . 
1.4.12.  Анализ  
Във всички  проучвания  следва  да се постигне  адекватно  
събиране  (целта  следва  да бъде  средно  100 ± 10 % от радио­  
активността  и всяко  отклонение  следва  да се обоснове ). Колич­  
еството  изпитвано  вещество  в рецепторния  флуид , кожата  на 
изпитване , отпадъците  при измиване  на кожната  повърхност  и 
течността  от изплакването  на апарата  следва  да се анализират  с 
помощта  на подходящи  техники . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 649
 
2. ДАННИ  
Трябва  да бъде  направи  анализ  на рецепторния  флуид , 
разпределението  на изпитваното  вещество  в системата  за 
изпитване  и абсорбционния  профил  във времето . Когато  се 
прилагат  условия  с крайна  доза на излагане , следва  да се 
изчислят  количеството , измито  от кожата , количеството , 
свързано  с кожата  (и в различните  слоеве  на кожата , ако е 
анализирано ), и наличното  количество  в рецепторния  флуид  
(степен  и количество  или процент  от приложената  доза). 
Кожната  абсорбция  понякога  може  да се опише  само  с 
данните  от рецепторния  флуид . Въпреки  това, когато  остане  
изпитвано  вещество  в кожата  в края  на проучването , то може  
да се наложи  да се включи  в общото  абсорбирано  количество  
(вж. параграф  66 в препратка  3). Когато  се използват  условия  с 
безкрайна  доза на излагане , данните  могат  да позволят  да се 
изчисли  константата  на проницаемост  (Кр). При такива  
условия  процентът  на абсорбиране  не е приложим . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  следва  да съдържа  изискванията , 
описани  в протокола , включително  и обосновка  за използваната  
система  на изпитване , и следва  да се състои  от следното : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа , физикохимични  свойства  (поне  молекулно  
тегло  и log Pow), чистота  (радиохимична  чистота ); 
— идентификационна  информация  (например  номер  на 
партида ); 
— разтворимост  в рецепторния  флуид . 
Изпитван  препарат : 
— формула  и основание  за използване ; 
— хомогенност . 
Условия  на изпитване : 
— източници  и място  на кожата , метод  на подготовка , условия  
на съхранение  преди  употреба , някаква  предварителна  
обработка  (почистване , третиране  с антибиотици  и др.), 
измервания  на ненарушеността  на кожата , метаболитен  
статус , основание  за употреба ; 
— вид клетка , състав  на рецепторния  флуид , количество  на 
потока  на рецепторния  флуид  или времена  и процедури  за 
вземане  на пробите ; 
— подробности  за прилагането  на изпитвания  препарат  и 
количеството  използвана  доза; 
— продължителност  на експозиция ; 
— подробности  за отстраняването  на изпитвания  препарат  от 
кожата , напр . изплакване  на кожата ; 
— подробности  за анализа  на кожата  и техниките  на 
раздробяване , използвани  за показване  на разпределението  
в кожата ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 650
 
— процедури  за миене  на клетката  и оборудването ; 
— методи  на изпитание , техники  на екстракция , граници  на 
откриване  и на валидиране  на метода  за анализ . 
Резултати : 
— цялостна  събираемост  от експеримента  (приложена  доза = 
материали  от измиването  на кожата  + кожа  + рецепторен  
флуид  + материали  от измиването  на клетката ); 
— таблично  представяне  на събираното  във всяко  отделение  на 
отделната  клетка ; 
— абсорбционен  профил ; 
— представяне  в табличен  вид на абсорбционните  данни  
(изразени  като съотношение , количество  или процент ). 
Обсъждане  на резултатите . 
Изводи . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Testing Method B.44. Skin Absorption:  In vivo  Method.  
(2) OECD (2002). Guidance Document for the Conduct of Skin 
Absorption Studies. OECD, Paris.  
(3) OECD (2000). Report of the Meeting of the OECD Extended 
Steering Committee for Percutaneous Absorption Testing, Annex 1 to ENV/JM/TG(2000)5. OECD, Paris.
 
(4) Kemppainen B. W. and Reifenrath W. G. (1990). Methods for 
skin absorption. CRC  
(5) Bronaugh R. L. and Collier, S. W. (1991). Protocol for  In vitro  
Percutaneous Absorption Studies, in  In vitro Percutaneous 
Absorption: Principles, Fundamentals and Applications,  R. 
L. Bronaugh and HI Maibach, Eds., CRC Press, Boca Raton, pp. 237—241.
 
(6) Bronaugh R. L. and Maibach H. I. (1991).  In vitro Percu ­
taneous Absorption: Principles, Fundamentals and Applica ­
tions.  CRC Press, Boca Raton.  
(7) European Centre for Ecotoxicology and Toxicology of 
Chemicals (1993). Monograph No. 20, Percutaneous Absor ­
ption, ECETOC, Brussels.  
(8) Diembeck W., Beck H., Benech-Kieffer F., Courtellemont P., 
Dupuis J., Lovell W., Paye M., Spengler J., Steiling W. 
(1999). Test Guidelines for  In Vitro  Assessment of Dermal 
Absorption and Percutaneous Penetration of Cosmetic Ingre ­
dients, Fd Chem Tox, 37, 191—205.  
(9) Recommended Protocol for  In vitro  Percutaneous Absorption 
Rate Studies (1996). US Federal Register, Vol. 61, No. 65.  
(10) Howes D., Guy R., Hadgraft J, Heylings J. R.  et al.  (1996). 
Methods for assessing Percutaneous absorption. ECVAM 
Workshop Report ATLA 24, 81 R10.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 651
 
(11) Schaefer H. and Redelmeier T. E. (1996). Skin barrier: prin ­
ciples of percutaneous absorption. Karger, Basel.  
(12) Roberts M. S. and Walters K. A. (1998). Dermal absorption 
and toxicity assessment. Marcel Dekker, New York.  
(13) Jewell, C., Heylings, J. R., Clowes, H. M. and Williams, F. M. 
(2000). Percutaneous absorption and metabolism of dinitroch ­
lorobenzene in vitro. Arch Toxicol 74: 356—365.  
Фигура  1 
Пример  за типична  конструкция  на статична  дифузна  клетка  за изследване  
in vitro  на перкутанна  абсорбция
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 652
 
Б.46. IN VITRO  КОЖНО  ДРАЗНЕНЕ : МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
ВЪРХУ  РЕКОНСТРУИРАН  ЧОВЕШКИ  ЕПИДЕРМИС  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Кожно  дразнене  означава  предизвикване  на обратимо  увреждане  на 
кожата  вследствие  на прилагането  на изпитвано  вещество  за период  
от време  до 4 часа [както  е определено  в Глобалната  хармонизирана  
система  за класифициране  и етикетиране  на химикали  (GHS) на Орга­  
низацията  на обединените  нации  (ООН ) и Регламент  (ЕО) № 1272/2008 
на Европейския  парламент  и на Съвета  от 16 декември  2008 г. относно  
класифицирането , етикетирането  и опаковането  на вещества  и смеси  
(Регламент  CLP) (1) (3)]. Настоящият  метод  за изпитване  (МИ) 
съдържа  in vitro  процедура , която  може  да се използва  за определянето  
на опасността  от дразнещи  химикали  (вещества  и смеси ) в съотв­  
етствие  с категория  2 по GHS на ООН  и Регламент  CLP на ЕС (1) 
(2) (3). В ЕС и други  региони , които  не са приели  незадължителната  
категория  3 по GHS на ООН  (слаби  дразнители ), настоящият  МИ може  
също  така да се използва  за определяне  на некласифицирани  химикали , 
т.е. без категория  по GHS на ООН  и Регламент  CLP на ЕС (1) (3). 
Настоящият  МИ може  да се използва  за определяне  на дразнещия  
ефект  на химикали  върху  кожата  като напълно  самостоятелно  
заместващо  изпитване  на in vivo  изпитването  за кожно  дразнене  в 
рамките  на стратегия  за поетапно  изпитване  (4) и глава  Б.4 от 
настоящото  приложение ). 
2. Оценката  на кожното  дразнене  обикновено  включва  използването  на 
опитни  животни  [Указание  за изпитване  404 на ОИСР ; глава  Б.4 от 
настоящото  приложение ] (4). Метод  Б.4 бе преработен  през 2004 г. във 
връзка  със съображенията  за хуманно  отношение  към животните , което  
позволи  определянето  на корозивността /дразненето  на кожата  с прил­  
агането  на стратегия  за поетапно  изпитване , като се използват  
валидирани  in vitro  и ex vivo  методи  и по този начин  се избягват  
болката  и страданието  на животните . Три валидирани  метода  за in 
vitro  изпитване  бяха  приети  като указания  за изпитване  430, 431 и 
435 на ОИСР  (5) (6) (7) и два от тях като глави  Б.40 и Б.40 bis от 
настоящото  приложение , които  следва  да се използват  за свързаната  с 
корозивността  част на стратегията  за поетапно  изпитване  от метод  Б.4 
или Указание  за изпитване  404 на ОИСР  (4). 
3. Предмет  на настоящия  МИ е кожното  дразнене  като опасност  за 
човешкото  здраве . Той се основава  на реконструиран  човешки  
епидермис  (RhE), който  поради  цялостното  си устройство  (изп­  
олзването  на човешки  нетрансформирани  епидермални  кератиноцити  
като източник  на клетки , както  и на използването  на представителна  
тъканна  и клетъчна  структура ) силно  наподобява  биохимичните  и 
физиологичните  свойства  на горните  слоеве  на човешката  кожа , т.е. 
на епидермиса . Настоящият  МИ също  така включва  набор  от стандарти  
за ефективност  (СЕ) (допълнение  2) за оценката  на сходни  и модиф­  
ицирани  методи  за изпитване , основани  на RhE и разработени  от 
EC-ECVAM (8), в съответствие  с принципите  на Ръководство  № 34 
на ОИСР  (9). 
4. Съществуват  три валидирани  метода , които  съответстват  на разг­  
леждания  тук МИ. Бяха  проведени  изследвания  преди  валидирането , 
както  и изследвания  за оптимизирането  и за валидирането  на метод  за 
in vitro  изпитване  (10) (11) (12) (13) (14) (15) (16) (17) (18) (19) (20), 
предлаган  на пазара  като EpiSkin  TM и използващ  модел  на реко­  
нструиран  човешки  епидермис  (RhE) ( определен  като валидирания  
референтен  метод  — ВРМ ). Други  два предлагани  на пазара  методи  
RhE за in vitro  изпитване  за кожно  дразнене  са показали  подобни  
резултати  като ВРМ  съгласно  валидиране , основано  на стандартите  
за ефективност  (21), и това са методите  EpiDerm  TM SIT (EPI-200) и 
SkinEthic  TM RHE (22).  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 653
 
5. Преди  предлаган  сходен  или модифициран  метод  RhE за in vitro  
изпитване , различен  от ВРМ  и методите  EpiDerm  TM SIT (EPI-200) 
или SkinEthic  TM RHE, да може  да бъде  използван  за регулаторни  
цели , следва  да се определят  неговата  надеждност , приложимост  
(точност ) и ограничения  за предложеното  му използване , за да се 
гарантира , че той може  да се счита  за сходен  с ВРМ , в съответствие  
със стандартите  за ефективност , определени  в настоящия  МИ 
(допълнение  2). Освен  това е препоръчително  да се направи  справка  
в Обяснителния  справочен  документ  на ОИСР  относно  in vitro  
изпитването  за кожно  дразнене , преди  разработването  и валидирането  
на сходен  или модифициран  метод  RhE за in vitro  изпитване  и предста­  
вянето  му за регулаторно  приемане  (23).  
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
6. Използваните  определения  са дадени  в допълнение  1. 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
7. Едно  ограничение  на МИ, както  бе демонстрирано  чрез изследването  
за валидиране  (16), се състои  в това, че той не позволява  класиф­  
ицирането  на химикали  в незадължителната  категория  3 по GHS на 
ООН  (леки  дразнители ) (1). Когато  се използва  като частично  
заместващо  изпитване , може  да се изиска  последващо  in vivo  
изпитване , за да се характеризира  напълно  потенциалът  за кожно  
дразнене  (4 и глава  Б.4 от настоящото  приложение ). Признава  се, че 
използването  на човешка  кожа  е предмет  на национални  и 
международни  етични  съображения  и условия . 
8. Предмет  на настоящия  МИ е in vitro  изпитването  за кожно  дразнене  
като елемент  от стратегията  за поетапно  изпитване  на Б.4 (Указание  за 
изпитване  404 на ОИСР ) относно  корозивност /дразнене  на кожата  (4). 
Докато  настоящият  МИ не предоставя  адекватна  информация  за 
корозивността  на кожата , следва  да се отбележи , че методът  за 
изпитване  Б.40 bis ( Указание  за изпитване  431 на ОИСР ) относно  
корозивността  на кожата  се основа  на една  и съща  система  за 
изпитване  RhE, макар  че се използва  друг  протокол  (глава  Б.40 bis). 
Настоящият  метод  се основава  на моделите  RhE, използващи  човешки  
кератиноцити , като по този начин  представя  in vitro  целевия  орган  на 
вида , представляващ  интерес . Освен  това той обхваща  пряко  първон­  
ачалния  етап от каскадата  на възпалението /механизмът  на действие  на 
възпалението  (увреждане  на клетки  и тъкани , водещо  до локализирана  
травма ), която /който  се появява  по време  на in vivo  дразнене . По време  
на валидирането , което  е залегнало  в основата  на настоящия  МИ, беше  
изпитан  широк  кръг  от химикали , като емпиричната  база данни  на 
изследването  за валидиране  наброяваше  общо  58 химикала  (16) (18) 
(23). Методът  е приложим  за твърди  вещества , течности , полутвърди  
вещества  и восъци . Течностите  може  да са на водна  или друга  основа ; 
твърдите  вещества  може  да са разтворими  или неразтворими  във вода . 
Където  е възможно , твърдите  вещества  преди  използването  им следва  
да бъдат  стрити  на фин прах , като не се изисква  никаква  друга  
предварителна  обработка  на пробата . Газовете  и аерозолите  все още 
не са оценени  с валидационно  проучване  (24). Въпреки  че е възможно  
те да бъдат  изпитвани  чрез използване  на технология  RhE, настоящият  
МИ не дава възможност  за изпитване  на газове  и аерозоли . Освен  това 
следва  да се отбележи , че силно  оцветените  химикали  могат  да окажат  
влияние  на измерванията  за жизнеспособността  на клетките  и е необ­  
ходимо  използването  на адаптирани  контроли  за корекции  (вж. точки  
24—26).  
9. Едно  изпитване , включващо  три тъканни  репликата , би следвало  да е 
достатъчно  за изпитването  на даден  химикал , когато  класификацията  е 
недвусмислена . При все това при наличие  на гранични  резултати , 
каквито  са несъответстващите  измервания  на репликати  и/или 
средната  жизнеспособност , изразена  процентно  като 50 ± 5 %, следва  
да се разгледа  възможността  за провеждане  на второ  изпитване , както  
и на трето  изпитване  в случай  на наличие  на несъответстващи  
резултати  между  първите  две изпитвания . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 654
 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
10. Изпитваният  химикал  се прилага  локално  на триизмерен  модел  на 
реконструиран  човешки  епидермис  (RhE), състоящ  се от нетранс­  
формирани  човешки  епидермални  кератиноцити , които  са култивирани  
да образуват  многослоен , силно  диференциран  модел  на човешкия  
епидермис . Той се състои  от организиран  базален , спинозен  и 
грануларен  слой , и от многослоен стратум  корнеум , съдържащ  межд­  
уклетъчни  ламелни  липидни  слоеве , представляващи  основните  
липидни  класове , аналогични  на тези, които  се наблюдават  in vivo . 
11. Кожното  дразнене , предизвикано  от химикали , което  се проявява  с 
еритема  и оток , е резултат  от поредица  от събития , започваща  с прон­  
икване  в роговия  слой  и увреждане  на по-долните  слоеве  кератиноцити . 
Умиращите  кератиноцити  освобождават  медиатори , които  дават  начало  
на каскадата  на възпалението , действаща  върху  клетките  в дермиса , по- 
специално  върху  стромалните  и ендотелиалните  клетки . Разширяването  
и повишената  пропускливост  на ендотелиалните  клетки  водят  до 
получаването  на наблюдаваните  еритема  и оток  (24). Основаните  на 
RhE методи  измерват  началните  събития , настъпващи  в рамките  в 
каскадата . 
12. Клетъчната  жизнеспособност  в моделите  RhE се измерва  чрез ензимно  
превръщане  на виталния  оцветител  MTT [3-(4,5- диметилтиазол -2-ил)- 
2,5-дифенилтетразолиев  бромид , тиазолил  синьо ; CAS номер  298-93-1] 
в синя  формазанова  сол, която  се измерва  количествено  след  
екстракция  от тъканите  (25). Дразнещите  химикали  се определят  по 
способността  им да намаляват  клетъчната  жизнеспособност  под 
определени  прагови  нива  (т.е. ≤ 50 % за дразнители  от категория  2 
по GHS на ООН /Регламент  CLP на ЕС). В зависимост  от регулаторната  
рамка , в която  се използват  резултатите  от настоящия  МИ, химик­  
алите , при които  клетъчната  жизнеспособност  е над определеното  
прагово  ниво , могат  да се считат  за химикали , които  не са дразнители  
(т.е. > 50 %, „ Без категория “). 
ДОКАЗВАНЕ  НА КОМПЕТЕНТНОСТ  
13. Преди  рутинното  използване  на който  и да било  от трите  валидирани  
метода , които  се придържат  към настоящия  МИ, лабораториите  следва  
да докажат  техническа  компетентност , като използват  десетте  
референтни  химикала , посочени  в таблица  1. По отношение  на 
сходни  методи , разработени  съгласно  настоящия  МИ, или изменения  
на някой  от трите  валидирани  метода , следва  да бъдат  спазени  изис­  
кванията  на стандартите  за ефективност , описани  в допълнение  2 от 
настоящия  МИ, преди  методът  да бъде  използван  за регулаторно  
изпитване . 
14. Като  част от процедурата  за доказване  на компетентност , е препоръч­  
ително  след  получаването  на тъканите  ползвателят  да провери  
бариерните  им свойства , както  е посочено  от производителя  на 
модела  на RhE. Това  е особено  важно , ако тъканите  са били  
превозвани  на дълго  разстояние  или в продължение  на дълги  
периоди  от време . След  като един  метод  е успешно  установен  и е 
доказана  компетентност  по отношение  на неговото  използване , 
такава  проверка  няма  да бъде  рутинно  необходима . Когато  обаче  
методът  се използва  рутинно , се препоръчва  да се продължи  
оценяването  на бариерните  свойства  на редовни  интервали . 
Таблица  1 
Референтни  химикали  ( 1 ) 
Химикал  CAS № Балова  оценка  in 
vivo ( 2 ) Агрегатно  
състояние  Категория  по GHS 
на ООН / Регламент  
CLP на ЕС 
Нафтилоцетна  киселина  86-87-3 0 Твърдо  Без категория  
Изопропанол  67-63-0 0,3 Течно  Без категория  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 655
 
Химикал  CAS № Балова  оценка  in 
vivo ( 2 ) Агрегатно  
състояние  Категория  по GHS 
на ООН / Регламент  
CLP на ЕС 
Метилов  стеарат  112-61-8 1 Твърдо  Без категория  
Хептил  бутират  5870-93-9 1,7 Течно  Без категория  
(Незадължителна  
категория  
3) ( 3 ) ( 4 ) 
Хексил  салицилат  6259-76-3 2 Течно  Без категория  
(Незадължителна  
категория  
3) ( 3 ) ( 4 ) 
Цикламен  алдехид  103-95-7 2,3 Течно  Категория  2 
1-бромхексан  111-25-1 2,7 Течно  Категория  2 
Калиев  хидроксид  (5 % воден  
разтвор ) 1310-58-3 3 Течно  Категория  2 
1-метил -3-фенил -1-пиперазин  5271-27-2 3,3 Твърдо  Категория  2 
Хептанал  111-71-7 3,4 Течно  Категория  2 
( 1 ) Тези  референтни  химикали  са подгрупа  на референтните  химикали , използвани  при изследването  за валидиране . 
( 2 ) Балова  оценка  in vivo  в съответствие  с Б.4 и Указание  за изпитване  404 на ОИСР  (4). 
( 3 ) Съгласно  настоящия  метод  за изпитване , незадължителната  категория  3 по GHS на ООН  (слаби  дразнители ) се счита  за 
„Без категория “. 
( 4 ) Незадължителната  категория  3 по GHS на ООН  не е приложима  съгласно  Регламент  CLP на ЕС. 
ПРОЦЕДУРА  
15. По-долу  са описани  елементите  и процедурите  на метод  RhE за оценка  
на кожно  дразнене . Следва  да бъде  реконструиран  модел  на RhE, като 
той може  да бъде  изготвен  на място  или закупен  от търговски  
източник . Налични  са стандартни  работни  процедури  (СРП ) за 
методите  EpiSkin  TM , EpiDerm  TM SIT (EPI-200) и SkinEthic  TM RHE 
(26) (27) (28). Изпитването  следва  да се провежда  съгласно  следните  
изисквания : 
Елементи  на метода  за изпитване  RhE  
Общи  условия  
16. За реконструирането  на епитела  следва  да се използват  нетранс­  
формирани  човешки  кератиноцити . Под функционалния  рогов  слой  
следва  да има множество  слоеве  от жизнеспособни  епителни  клетки  
(базален , спинозен  и грануларен  слой ). Роговият  слой  следва  да бъде  
многослоен  и да съдържа  основния  липиден  профил , за да създаде  
функционална  бариера , която  е достатъчно  здрава , за да устои  на 
бързото  проникване  на цитотоксични  химични  маркери , например  
натриев  додецил  сулфат  (SDS) или Triton X-100. Бариерната  функция  
следва  да бъде  доказана  и може  да бъде  оценена  или чрез определяне  
на концентрацията , при която  химичен  маркер  намалява  жизнеспособ­  
ността  на тъканите  с 50 % (IC  50 ) след  определено  време  на експозиция , 
или чрез определяне  на времето  на експозиция , необходимо  за 
намаляване  на жизнеспособността  с 50 % (ET  50 ) при прилагане  на 
химичния  маркер  с определена  фиксирана  концентрация . Задържащите  
свойства  на модела  на RhE следва  да предотвратяват  преминаването  на 
материал  около  роговия  слой  към жизнеспособната  тъкан , което  би 
довело  до неадекватно  моделиране  на експозицията  на кожата . 
Моделът  на RhE следва  да не е заразен  с бактерии , вируси , микоплазма  
или гъбички . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 656
 
Функционални  условия  
Жизнеспособност  
17. Използваното  изпитване  за определяне  на величината  на жизнеспособ­  
ността  е изпитването  с MTT (25). Ползвателите  на модела  на RhE 
следва  да гарантират , че всяка  използвана  партида  от модела  на RhE 
отговаря  на определените  критерии  за отрицателната  контрола  (ОК). 
Оптичната  плътност  (ОП) на разтворителя , който  се използва  за 
екстракцията , сама  по себе си следва  да бъде  достатъчно  малка , т.е. 
ОП < 0.1. Разработчикът /доставчикът  на модела  на RhE определя  
интервал  на приемливост  (горна  и долна  граница ) за стойностите  на 
ОП на отрицателната  контрола  (при условията  на метода  за изпитване  
за кожно  дразнене ), като интервалите  на приемливост  за трите  
валидирани  метода  са дадени  в таблица  2. Следва  да се документира , 
че тъканите , третирани  с ОК, са стабилни  като култура  (дават  сходни  
измервания  на жизнеспособността ) за периода  на продължителност  на 
експозицията  при изпитването . 
Таблица  2 
Интервали  на приемливост  за стойностите  на ОП на отрицателната  контрола  
Долна  граница  на приемливост  Горна  граница  на приемливост  
EpiSkin  TM (SM) ≥ 0,6 ≤ 1,5 
EpiDerm  TM SIT (EPI-200) ≥ 1,0 ≤ 2,5 
SkinEthic  TM RHE ≥ 1,2 ≤ 2,5 
Бариерна  функция  
18. Роговият  слой  и липидният  му състав  следва  да бъдат  достатъчни , за 
да устоят  на бързото  проникване  на цитотоксични  химични  маркери , 
например  SDS или Triton X-100, оценено  с IC 50 или ET  50 (таблица  3). 
Морфология  
19. Следва  да бъде  проведено  хистологично  изследване  на модела  на RhE, 
за да се докаже  структура , подобна  на човешки  епидермис  (включ­  
ително  на многослойния  рогов  слой ). 
Възпроизводимост  
20. Резултатите  от положителните  контролни  химикали  (ПК) и отрицат­  
елните  контроли  (ОК) на метода  за изпитване  следва  да доказват  
възпроизводимост  с течение  на времето . 
Контрол  на качеството  (КК) 
21. Разработчикът /доставчикът  на модела  на RhE следва  да гарантира  и 
докаже , че всяка  използвана  партида  от модела  на RhE отговаря  на 
определени  критерии  за пускане  в обращение  на продукцията , сред  
които  най-значими  са тези за жизнеспособността  (точка  17),  
бариерната  функция  (точка  18) и морфологията  (точка  19). Тези  
данни  следва  да бъдат  предоставени  на ползвателите  на метода , така 
че те да могат  да включат  тази информация  в протокола  от 
изпитването . Разработчикът /доставчикът  на модела  на RhE (или изсле­  
дователят , ако се използва  собствен  модел ) следва  да определи  
интервал  на приемливост  (горна  и долна  граница ) за IC  50 или ET  50 . 
За надеждно  прогнозиране  на класификацията  на дразненето  могат  да 
се приемат  само  резултати , получени  с отговарящи  на изискванията  
тъкани . Интервалите  на приемливост  за трите  валидирани  метода  са 
дадени  като пример  в таблица  3. ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 657
 
Таблица  3 
Примери  за критерии  на контрол  на качеството  на партида  за пускане  в обращение  
Долна  граница  на приемливост  Горна  граница  на приемливост  
EpiSkin  TM (SM) 
(18-часово  третиране  с SDS) (26) IC 50 = 1,0 mg/ml IC  50 = 3,0 mg/ml 
EpiDerm  TM SIT (EPI-200) 
(1 % Triton X-100) (27) ET 50 = 4,8 h ET  50 = 8,7 h 
SkinEthic  TM RHE 
(1 % Triton X-100) (28) ET 50 = 4,0 h ET  50 = 9,0 h  
Прилагане  на изпитваните  и контролните  химикали  
22. За всеки  изпитван  химикал  и за контролите  във всяко  изпитване  следва  
да се използват  най-малко  три репликата . За течни , както  и за твърди  
вещества  следва  да се прилага  достатъчно  количество  от изпитвания  
химикал  за равномерното  покриване  на повърхността  на епидермиса , 
като същевременно  се избягва  прилагането  на изобилна  доза, т.е. 
следва  да се използват  най-малко  25 μL/cm  2 или 25 mg/cm  2 . Преди  
прилагането  на твърдите  вещества  повърхността  на епидермиса  
следва  да се овлажни  с дейонизирана  или дестилирана  вода , за да се 
подобри  контакта  между  изпитвания  химикал  и повърхността  на 
епидермиса . Когато  е възможно , твърдите  вещества  следва  да се 
изпитват  под формата  на фин прах . В края  на периода  на експозиция  
изпитваният  химикал  следва  внимателно  да се измие  от повърхността  
на епидермиса  с буферен  воден  разтвор  или 0,9 % NaCl. В зависимост  
от това кой от трите  валидирани  метода  на RhE се използва , периодът  
на експозиция  варира  между  15 и 60 минути , а температурата  на 
инкубация  — между  20 и 37 °C. Тези  периоди  на експозиция  и 
температури  са оптимизирани  за всеки  метод  на RhE и представляват  
различните  присъщи  свойства  на методите , за подробности  вж. 
стандартните  работни  процедури  (СРП ) за методите  (26) (27) (28).  
23. За да се докаже , че жизнеспособността  (с ОК), бариерната  функция  и 
получената  в резултат  тъканна  чувствителност  (с ПК) на тъканите  са в 
границите  на определен  от предишни  изследвания  интервал  на прием­  
ливост , при всяко  изпитване  следва  да се използват  паралелни  отриц­  
ателни  (ОК) и положителни  контроли  (ПК). За положителна  контрола  е 
предложен  5 % воден  разтвор  на SDS. Като  химикали  за отрицателни  
контроли  са предложени  вода  или буферен  физиологичен  разтвор  с 
фосфат  (PBS).  
Измервания  на клетъчната  жизнеспособност  
24. Най-важният  елемент  на процедурата  за изпитване  е измерванията  на 
жизнеспособността  да не се провеждат  веднага  след експозицията  на 
изпитваните  химикали , а в чиста  среда  след достатъчно  дълъг  инкуб­  
ационен  период  след третирането  на промитите  тъкани . Този  период  
позволява  както  възстановяването  от леките  цитотоксични  ефекти , така 
и появата  на ясно  изразени  цитотоксични  ефекти . По време  на фазата  на 
оптимизиране  на изпитването  (11) (12) (13) (14) (15) беше  доказано , че 
оптималният  период  на инкубация  след третирането  е 42 часа. 
25. Изпитването  с MTT е валидиран  количествен  метод , който  следва  да се 
използва  за измерване  на клетъчната  жизнеспособност  съгласно  
настоящия  МИ. Той е съвместим  с използване  в триизмерни  тъканни  
модели . Кожната  проба  се поставя  в разтвор  на MTT с подходяща  
концентрация  (например  0,3—1 mg/mL) за 3 часа. След  това 
утаеният  син формазанов  продукт  се извлича  от тъканта  с помощта  
на разтворител  (например  изопропанол , киселинен  изопропанол ), а 
концентрацията  на формазан  се измерва , като се определи  ОП при 
570 nm, използвайки  ширина  на филтърната  дължина  на вълната  
най-много  ± 30 nm.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 658
 
26. Оптичните  свойства  на изпитвания  химикал  или химичното  му възде­  
йствие  върху  MTT могат  да повлияят  на изпитването , като доведат  до 
погрешна  оценка  на жизнеспособността  (защото  изпитваният  химикал  
може  да предотврати , да предизвика  или да промени  оцветяването ). 
Това  може  да се случи , ако определен  изпитван  химикал  не бъде  
напълно  отстранен  от тъканта  чрез промиване  или когато  проникне  
през епидермиса . Ако изпитваният  химикал  действа  пряко  върху  
MTT (редуктор  на МТТ ), ако е естествено  оцветен  или се оцветява  
по време  на третиране  на тъканта , следва  да се използват  допълн­  
ителни  контроли , за да се открие  и коригира  въздействието  на 
изпитвания  химикал  върху  техниката  за измерване  на жизнеспособ­  
ността . Подробно  описание  на това как да се коригира  пряката  
редукция  на MTT и въздействията  на оцветителите  е налично  в СРП  
за трите  валидирани  метода  (26) (27) (28).  
Критерии  за приемливост  
27. За всеки  модел , използващ  валидни  партиди  на модели  на RhE (вж. 
точка  21), тъканите , третирани  с отрицателната  контрола , следва  да 
показват  оптична  плътност , отразяваща  състоянието  на тъканите , 
които  са преминали  през етапите  по транспортиране  и приемане , 
както  и през всички  процедури  по протокола . Стойностите  на 
оптичната  плътност  на контролите  не трябва  да са по-ниски  от уста­  
новените  граници  от предишни  изпитвания . По подобен  начин  
тъканите , третирани  с положителната  контрола , т.е. 5 % воден  
разтвор  на SDS, следва  да отразяват  способността  им да реагират  на 
дразнещ  химикал  при условията  на МИ (26) (27) (28). Следва  да се 
определят  съответни  и подходящи  критерии  за оценка  на вариабил­  
ността  между  тъканните  репликати  (например  ако се използват  
стандартните  отклонения  (СО), те следва  да бъдат  в рамките  на 1- 
странен  интервал  на толерантност  от 95 %, изчислен  на базата  на 
данни  от предишни  изследвания ; за СО на ВРМ  < 18 %).  
Интерпретация  на резултатите  и модел  за прогнозиране  
28. Получените  стойности  за оптична  плътност  за всеки  изпитван  химикал  
могат  да се използват  за изчисляването  на процентната  жизнес­  
пособност , нормализирана  спрямо  ОК, която  е определена  на 100 %. 
Граничната  стойност  за процента  на клетъчната  жизнеспособност , 
която  разграничава  дразнещите  от некласифицираните  изпитвани  
химикали , и статистическата (ите) процедура (и), използвана (и) за 
оценка  на резултатите  и определяне  на дразнещите  химикали , следва  
да бъдат  ясно  определени  и документирани , както  и доказано  целесъ­  
образни . Граничните  стойности  за прогнозиране  на дразненето  са 
дадени  по-долу : 
— Изпитваният  химикал  се счита  за дразнещ  кожата  в съответствие  с 
категория  2 по GHS на ООН /Регламент  CLP на ЕС, ако жизнес­  
пособността  на тъканта  след  експозиция  и инкубация  след  
третирането  е по-малка  или равна  (≤) на 50 %.  
— В зависимост  от регулаторната  рамка , в която  се използват  
резултатите  от настоящия  МИ, изпитваният  химикал  може  да се 
счита  за недразнещ  кожата  в съответствие  с категорията  „Без 
категория “ по GHS на ООН /Регламент  CLP на ЕС, ако жизнес­  
пособността  на тъканта  след  експозиция  и инкубация  след  
третирането  е по-голяма  (>) от 50 %.  
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
29. За всяко  изпитване  следва  да се докладват  в табличен  вид данни  от 
отделните  тъканни  репликати  (например  данни  за стойностите  на 
оптична  плътност  и изчисления  процент  на клетъчната  жизнес­  
пособност  за всеки  изпитван  химикал , включително  класифициране ), 
включително  данни  от повторните  опити , ако е целесъобразно . В 
допълнение  следва  да се докладват  средните  стойности  ± стандартното  
отклонение  за всяко  изпитване . Наблюдаваните  взаимодействия  с 
реагента  MTT и оцветените  изпитвани  химикали  следва  да се 
докладват  за всеки  изпитван  химикал . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 659
 
Протокол  от изпитването  
30. Протоколът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитвани  и контролни  химикали : 
— химично (и) наименование (я) като CAS наименование  и номер  и ЕС 
наименование  и номер , ако са известни ; 
— чистота  и състав  на химикала  (в тегловни  проценти ); 
— физични /химични  свойства , които  имат  отношение  към 
провеждането  на изпитването  (напр . агрегатно  състояние , усто­  
йчивост , летливост , pH и разтворимост  във вода , ако са известни ); 
— обработка  на изпитваните /контролните  химикали  преди  
изпитването , ако е приложимо  (напр . нагряване , стриване ); 
— условия  за съхранение . 
Обосновка  на използвания  модел  на RhE и протокол  
Условия  на изпитване : 
— използвана  клетъчна  система ; 
— пълна  придружаваща  информация  за конкретния  използван  модел  
на RhE, включително  качествените  му показатели ; това следва  да 
включва , но не се ограничава  до: 
i) жизнеспособност ; 
ii) бариерна  функция ; 
iii) морфология ; 
iv) възпроизводимост  и предсказуемост ; 
v) контрол  на качеството  (КК) на модела ; 
— подробна  информация  за използваната  процедура  на изпитване ; 
— използвани  дози  при изпитването , продължителност  на експоз­  
ицията  и инкубационен  период  след  третирането ; 
— описание  на всякакви  изменения  на процедурата  за изпитване ; 
— препратка  към данни  за модела  от предишни  изпитвания ; това 
следва  да включва , но не се ограничава  до: 
i) приемливост  на данните  за КК по отношение  на партидни  данни  
от предишни  изпитвания ; 
ii) приемливост  на стойностите  от положителните  и отрицателните  
контроли  по отношение  на средните  стойности  и интервалите  на 
положителните  и отрицателните  контроли ; 
— описание  на използваните  критериите  за оценка , включително  обос­  
новката  за избора  на граничната (ите) точка (и) за модела  за прог­  
нозиране ; 
— препратка  към контролни  данни  от предишни  изпитвания . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 660
 
Резултати : 
— таблично  представяне  на данните  за отделните  изпитвани  химикали  
за всяко  изпитване  и всяко  измерване  на репликати ; 
— посочване  на използваните  контроли  за преките  редуктори  на MTT 
и/или оцветяващите  изпитвани  химикали ; 
— описание  на други  наблюдавани  ефекти . 
Обсъждане  на резултатите  
Заключение  
ЛИТЕРАТУРА  
(1) UN (2009), United Nations Globally Harmonized System of Classification 
and Labelling of Chemicals (GHS), Third revised edition, UN New York 
and Geneva. На разположение  на адрес : [http://www.unece.org/trans/dan ­
ger/publi/ghs/ghs_rev03/03files_e.html]  
(2) EC-ECVAM (2009), Statement on the „Performance under UN GHS of 
three  in vitro  assays for skin irritation testing and the adaptation of the 
Reference Chemicals and Defined Accuracy Values of the ECVAM skin 
irritation Performance Standards“, issued by the ECVAM Scientific Advisory Committee (ESAC30), 9 април  2009 г. На разположение  на 
адрес : [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]
 
(3) Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
16 декември  2008 г. относно  класифицирането , етикетирането  и опак­  
оването  на вещества  и смеси , за изменение  и за отмяна  на директиви  
67/548/ЕИО  и 1999/45/ ЕО и за изменение  на Регламент  (ЕО) 
№ 1907/2006. ОВ L 353, 31.12.2008 г., стр. 1. 
(4) OECD (2004), Acute Dermal Irritation/Corrosion, OECD Guideline for the 
Testing of Chemicals № 404, OECD, Paris. На разположение  на адрес : 
[http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(5) OECD (2004),  In Vitro  Skin Corrosion: Transcutaneous Electrical 
Resistance (TER), OECD Guideline for the Testing of Chemicals № 430, 
OECD, Paris. На разположение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/test ­
guidelines]  
(6) OECD (2004),  In Vitro  Skin Corrosion: Human Skin Model Test, OECD 
Guideline for the Testing of Chemicals № 431, OECD, Paris. На разп­  
оложение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(7) OECD (2006),  In Vitro  Membrane Barrier Test Method for Skin Corrosion, 
OECD Guideline for the Testing of Chemicals № 435, OECD, Paris. На 
разположение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(8) EC-ECVAM (2009), Performance Standards for  in vitro  skin irritation test 
methods based on Reconstructed human Epidermis (RhE)? На разп­  
оложение  на адрес : [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(9) OECD (2005), Guidance Document on the Validation and International 
Acceptance of New or Updated Test Methods for Hazard Assessment, OECD Series on Testing and Assessment № 34, OECD, Paris. На разп­  
оложение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]
 
(10) Fentem, J.H., Briggs, D., Chesné, C., Elliot, G.R., Harbell, J.W., Heylings, 
J.R., Portes, P., Roguet, R., van de Sandt, J.J. M. and Botham, P. (2001), A 
prevalidation study on  in vitro  tests for acute skin irritation, Results and 
evaluation by the Management Team, Toxicol. in Vitro 15, 57-93.  
(11) Portes, P., Grandidier, M.-H., Cohen, C. and Roguet, R. (2002), Refinement 
of the EPISKIN protocol for the assessment of acute skin irritation of 
chemicals: follow-up to the ECVAM prevalidation study, Toxicol. in 
Vitro 16, 765–770.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 661
 
(12) Kandárová, H., Liebsch, M., Genschow, E., Gerner, I., Traue, D., Slawik, 
B. and Spielmann, H. (2004), Optimisation of the EpiDerm test protocol for 
the upcoming ECVAM validation study on  in vitro  skin irritation tests, 
ALTEX 21, 107–114.  
(13) Kandárová, H., Liebsch, M., Gerner, I., Schmidt, E., Genschow, E., Traue, 
D. and Spielmann, H. (2005), The EpiDerm test protocol for the upcoming 
ECVAM validation study on  in vitro  skin irritation tests – An assessment of 
the performance of the optimised test, ATLA 33, 351-367.  
(14) Cotovio, J., Grandidier, M.-H., Portes, P., Roguet, R. and Rubinsteen, G. 
(2005), The  in vitro  acute skin irritation of chemicals: optimisation of the 
EPISKIN prediction model within the framework of the ECVAM validation 
process, ATLA 33, 329-349.  
(15) Zuang, V., Balls, M., Botham, P.A., Coquette, A., Corsini, E., Curren, R.D., 
Elliot, G.R., Fentem, J.H., Heylings, J.R., Liebsch, M., Medina, J., Roguet, 
R., van De Sandt, J.J.M., Wiemann, C. and Worth, A. (2002), Follow-up to 
the ECVAM prevalidation study on  in vitro  tests for acute skin irritation, 
The European Centre for the Validation of Alternative Methods Skin Irri ­
tation Task Force report 2, ATLA 30, 109-129.  
(16) Spielmann, H., mailto:Hoffmann, S., Liebsch, M., Botham, P., Fentem, J., 
Eskes, C., Roguet, R., Cotovio, J., Cole, T., Worth, A., Heylings, J., Jones, 
P., Robles, C., Kandárová, H., mailto:Gamer, A., Remmele, M., Curren, R., Raabe, H., Cockshott, A., Gerner, I. and Zuang, V. (2007), The ECVAM 
international validation study on  in vitro  tests for acute skin irritation: 
Report on the validity of the EPISKIN and EpiDerm assays and on the skin integrity function test, ATLA 35, 559-601.
 
(17) Hoffmann, S. (2006), ECVAM skin irritation validation study phase II: 
Analysis of the primary endpoint MTT and the secondary endpoint IL1- α. 
На разположение  на адрес : [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(18) Eskes, C., Cole, T., Hoffmann, S., Worth, A., Cockshott, A., Gerner, I. and 
Zuang, V. (2007), The ECVAM international validation study on  in vitro  
tests for acute skin irritation: selection of test chemicals, ATLA 35, 603- 
619. 
(19) Cotovio, J., Grandidier, M.-H., Lelièvre, D., Roguet, R., 
Tinois-Tessonneaud, E. and Leclaire, J. (2007),  In vitro  acute skin 
irritancy of chemicals using the validated EPISKIN model in a tiered 
strategy - Results and performances with 184 cosmetic ingredients, 
AATEX, 14, 351-358.  
(20) EC-ECVAM (2007), Statement on the validity of  in vitro  tests for skin irritation, 
issued by the ECVAM Scientific Advisory Committee (ESAC26), 27 април  
2007 г. На разположение  на адрес : [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(21) EC-ECVAM (2007), Performance Standards for applying human skin 
models to  in vitro  skin irritation testing. На разположение  на адрес : 
[http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(22) EC-ECVAM (2008), Statement on the scientific validity of  in vitro  tests 
for skin irritation testing, issued by the ECVAM Scientific Advisory 
Committee (ESAC29), 5 ноември  2008 г. На разположение  на адрес : 
[http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(23) OECD (2010), Explanatory background document to the OECD draft 
Test Guideline on  in vitro  skin irritation testing. OECD Series on 
Testing and Assessment, № 137, OECD, Paris. На разположение  на 
адрес : [http://www.oecd.org/document/24/0,3746,en_2649_34377_478589 
04_1_1_1_1,00.html]  
(24) Welss, T., Basketter, D.A. and Schröder, K.R. (2004),  In vitro  skin irri ­
tation: fact and future. State of the art review of mechanisms and models, 
Toxicol. in Vitro 18, 231-243.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 662
 
(25) Mosmann, T. (1983), Rapid colorimetric assay for cellular growth and 
survival: application to proliferation and cytotoxicity assays, J. Immunol. 
Methods 65, 55-63.  
(26) EpiSkin  TM SOP, Version 1.8 (February 2009), ECVAM Skin Irritation 
Validation Study: Validation of the EpiSkin  TM test method 15 min - 
42 hours for the prediction of acute skin irritation of chemicals. На разп­  
оложение  на адрес : [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(27) EpiDerm  TM SOP, Version 7.0 (Revised March 2009), Protocol for:  In vitro  
EpiDerm  TM skin irritation test (EPI-200-SIT), For use with MatTek Corpo ­
ration’s reconstructed human epidermal model EpiDerm (EPI-200). На 
разположение  на адрес : [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(28) SkinEthic  TM RHE SOP, Version 2.0 (February 2009), SkinEthic skin irri ­
tation test-42 а test method for the prediction of acute skin irritation of 
chemicals: 42 minutes application + 42 hours post-incubation. На разп­  
оложение  на адрес : [http://ecvam.jrc.ec.europa.eu]  
(29) Harvell, J.D., Lamminstausta, K., and Maibach, H.I. (1995), Irritant contact 
dermatitis, In: Practical Contact Dermatitis, стр. 7-18, (Ed. Guin J. D.). 
Mc Graw-Hill, New York.  
(30) Директива  2001/59/ ЕО на Комисията  от 6 август  2001 г. относно  
двадесет  и осмо  адаптиране  към техническия  прогрес  на Директива  
67/548/ЕИО  на Съвета  за сближаването  на законовите , подзаконовите  
и административните  разпоредби  относно  класификацията , опак­  
оването  и етикетирането  на опасни  вещества , ОВ L 225, 21.8.2001 г., 
стр. 1. 
(31) Basketter, D.A., York, M., McFadden, J.P. and Robinson, M.K. (2004), 
Determination of skin irritation potential in the human 4-h patch test. Contact Dermatitis 51, 1-4.
 
(32) Jirova, D., Liebsch, M., Basketter, D., Spiller, E., Kejlova, K., Bendova, H., 
Marriott, M. and Kandarova, H. (2007), Comparison of human skin irri ­
tation and photo-irritation patch test data with cellular  in vitro  assays and 
animal  in vivo  data, ALTEX, 14, 359-365.  
(33) Jírová, D., Basketter, D., Liebsch, M., Bendová, H., Kejlová, K., Marriott, 
M. and Kandárová, H. (2010), Comparison of human skin irritation patch 
test data with  in vitro  skin irritation assays and animal data, Contact Derma ­
titis, 62, 109-116.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 663
 
Допълнение  1 
Определения  
Точност : степента  на близост  на съвпадение  на резултатите  от метода  за 
изпитване  и приетите  референтни  стойности . Това  е мярка  за ефективността  
на метода  за изпитване  и един  от аспектите  на неговата  приложимост . 
Терминът  често  се използва  взаимозаменяемо  с термина  „съвпадение “, за 
да се обозначи  делът  на верните  резултати  на даден  метод  за изпитване  (9). 
Клетъчна  жизнеспособност : параметър , измерващ  общата  активност  на 
клетъчната  популация , например  като способност  на клетъчните  мито­  
хондриални  дехидрогенази  да намаляват  постъпването  на виталния  
оцветител  MTT (3-(4,5- диметилтиазол -2-ил)-2,5-дифенилтетразолиев  
бромид , тиазолил  синьо ) в клетките , което , в зависимост  от измерената  
крайна  точка  и използваната  процедура  на изпитване , корелира  с общия  
брой  и/или с виталността  на живите  клетки . 
Съответствие : това е мярка  за ефективността  на метод  за изпитване , 
използвана  за методи  за изпитване , които  предоставят  категоричен  
резултат , и е един  от аспектите  на приложимостта . Терминът  често  се 
използва  взаимозаменяемо  с термина  „точност “ и се определя  като делът  
на всички  изпитвани  химикали , които  са правилно  класифицирани  като 
положителни  или отрицателни  (9). 
ET 50 : може  да се оцени  чрез определяне  на времето  на експозиция , необ­  
ходимо  за намаляване  на клетъчната  жизнеспособността  с 50 % при 
прилагане  на химичния  маркер  с определена  фиксирана  концентрация , вж. 
също  IC 50 . 
Регламент  CLP на ЕС (Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  
парламент  и на Съвета  от 16 декември  2008 г. относно  класифицирането , 
етикетирането  и опаковането  на вещества  и смеси ): въвежда  в законодат­  
елството  на Европейския  съюз  (ЕС) системата  GHS на ООН  за класиф­  
ицирането  и етикетирането  на химикали  (вещества  и смеси ) (3).  
GHS (Глобална  хармонизирана  система  за класифициране  и етикетиране  
на химикали  на Организацията  на обединените  нации  (ООН ): система , 
предлагаща  класифициране  на химикали  (вещества  и смеси ) според  
стандартизирани  видове  и степени  на физическа , здравна  и екологична  
опасност  и разглеждаща  съответни  съобщителни  елементи , като например  
пиктограми , сигнални  думи , предупреждения  за опасност , препоръки  за 
безопасност  и информационни  листове  за безопасност , така че те да 
съобщават  информация  за тяхното  неблагоприятно  въздействие  с оглед  
защита  на хората  (включително  работодатели , работещи , служители  в транс­  
порта , потребители  и аварийни  служители ) и на околната  среда  (1). 
IC 50 : може  да се оцени  чрез определяне  на концентрацията  на химичния  
маркер , при която  жизнеспособността  на тъканите  се намалява  с 50 % (IC  50 ) 
след  фиксирано  време  на експозиция , вж. също  ET  50 . 
Изобилна  доза : количество  от изпитвания  химикал , приложено  върху  
епидермиса , което  надхвърля  количеството , необходимо  за пълно  и 
равномерно  покриване  на повърхността  на епидермиса . 
Вариантен  метод  за изпитване  (me-too test):  разговорен  израз  за метод  за 
изпитване , който  е структурно  и функционално  сходен  с валидиран  и приет  
референтен  метод  за изпитване . Такъв  метод  за изпитване  би могъл  да 
подлежи  на последващо  валидиране . Използва  се взаимозаменяемо  с 
термина  „сходен  метод  за изпитване “ (9).  
Стандарти  за ефективност  (СЕ): стандарти  въз основа  на валидиран  
метод  за изпитване , осигуряващи  основата  за оценка  на сравнимостта  на 
предложен  метод  за изпитване , който  е по своя  механизъм  и функционално  
сходен  с валидирания  метод . Включени  са: i) съществени  елементи  на 
метода  за изпитване ; ii) минимален  списък  на референтните  химикали , 
избрани  измежду  химикалите , които  са били  използвани  за доказване  на 
приемливата  ефективност  на валидирания  метод  за изпитване ; и iii) 
сходните  нива  за точност  и надеждност  въз основа  на получените  за 
валидирания  метод  за изпитване , които  предложеният  метод  за изпитване  
следва  да демонстрира  при оценяването  чрез използване  на минималния  
списък  на референтните  химикали  (9). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 664
 
Референтни  химикали : химикали , избрани  за използване  в процеса  на 
валидиране , чиито  реакции  по отношение  на системата  за in vitro  или in 
vivo референтни  изпитвания  или на представляващия  интерес  вид вече са 
известни . Тези  химикали  следва  да бъдат  представителни  на класовете  
химикали , за които  се очаква  да бъде  използван  методът  на изпитване , и 
следва  да представляват  пълния  спектър  от реакции , които  може  да се 
очакват  от химикалите , за които  може  да бъде  използван  настоящият  
метод : силни , слаби  и отрицателни  реакции . Могат  да се изискват  
различни  набори  от референтни  химикали  за отделните  етапи  на процеса  
на валидиране , както  и за отделните  методи  за изпитване  и отделните  прил­  
ожения  на изпитването  (9). 
Приложимост : описание  на взаимовръзката  между  изпитването  и ефекта , 
представляващ  интерес , и дали  тя е значима  и полезна  за определена  цел. 
Това  е степента , в която  изпитването  правилно  измерва  или прогнозира  
биологичния  ефект , представляващ  интерес . Приложимостта  включва  разг­  
леждането  на точността  (съответствието ) на метода  за изпитване  (9). 
Надеждност : мярка  за степента , в която  даден  метод  за изпитване  може  да 
се извърши  възпроизводимо  в една  и съща  лаборатория  и между  различни  
лаборатории  в течение  на времето , когато  се използва  един  и същи  
протокол . Надеждността  се оценява , като се изчислява  вътрешно - и межд­  
улабораторната  възпроизводимост  (9). 
Заместващо  изпитване : изпитване , предназначено  да замести  изпитване , 
което  се използва  рутинно  и е прието  за определяне  на опасността  и/или 
оценка  на риска , и за което  е установено , че предоставя  равностойна  или 
по-добра  защита  на здравето  на хората  или животните  или на околната  
среда , според  приложимото , в сравнение  с приетото  изпитване  за всички  
възможни  изпитвани  ситуации  и химикали  (9). 
Чувствителност : делът  на всички  положителни /активни  изпитвани  
химикали , които  са класифицирани  правилно  чрез изпитването . Това  е 
мярка  за точността  на метода  за изпитване , която  предоставя  категорични  
резултати  и е важен  фактор  при оценката  на приложимостта  на метода  за 
изпитване  (9). 
Кожно  дразнене : предизвикването  на обратимо  увреждане  на кожата  всле­  
дствие  на прилагането  на изпитван  химикал  за период  от време  до 4 часа. 
Кожното  дразнене  е локално  възникваща , неимуногенна  реакция , която  се 
появява  скоро  след  третирането  (29). Главната  му характеристика  е 
обратимият  му характер , който  включва  възпалителни  реакции  и повечето  
от характерните  клинични  признаци  на дразнене  (еритема , оток , сърбеж  и 
болка ), свързани  с възпалителен  процес . 
Специфичност : делът  на всички  негативни /неактивни  изпитвани  химикали , 
които  са класифицирани  правилно  чрез изпитването . Това  е мярка  за 
точността  на метода  за изпитване , която  предоставя  категорични  
резултати  и е важен  фактор  при оценката  на приложимостта  на метода  за 
изпитване  (9). 
Стратегия  за поетапно  изпитване : изпитване , при което  методите  за 
изпитване  се използват  поетапно ; избраните  методи  за изпитване  във 
всеки  следващ  етап се определят  въз основа  на резултатите  от предходния  
етап на изпитване  (9). 
Изпитван  химикал  (също  наричан  изпитвано  вещество ): всяко  вещество  
или смес , изпитвано (а) чрез използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 665
 
Допълнение  2 
Стандарти  за ефективност  за оценка  на предложени  сходни  или 
модифицирани  методи  за in vitro  изпитване  за кожно  дразнене  върху  
реконструиран  човешки  епидермис  (RhE)  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Целта  на стандартите  за ефективност  (СЕ) е да се съобщят  основа­  
нията , въз основа  на които  новите  методи , както  патентованите  (т.е. 
защитените  от авторско  право , официално  регистрираните  с търговска  
марка , регистрираните ), така и непатентованите , могат  да бъдат  
определени  като достатъчно  точни  и надеждни  за целите  на 
конкретни  изпитвания . Тези  СЕ, основани  на валидирани  и приети  
методи , могат  да бъдат  използвани  за оценяване  на надеждността  и 
точността  на други  аналогични  методи  (разговорно  наричани  
„варианти  аз също “ на тестовете ), които  се основават  на сходни  
научни  принципи  и които  измерват  или прогнозират  същия  
биологичен  или токсичен  ефект  (9). 
2. Преди  приемане  на модифицираните  методи , т.е. предложени  поте­  
нциални  подобрения  на одобрен  метод , следва  да бъде  извършена  
оценка  за определяне  на ефекта  на предложените  изменения  върху  
ефективността  на изпитването  и степента , до която  тези изменения  
засягат  наличната  информация  за другите  елементи  на процеса  на 
валидиране . В зависимост  от броя  и естеството  на предложените  
изменения , генерираните  данни  и придружаващата  документация  за 
тези изменения , те следва  или да бъдат  предмет  на същия  процес  на 
валидиране , който  е описан  за ново  изпитване , или, ако е приложимо , 
на ограничена  оценка  на надеждността  и приложимостта  чрез 
използване  на приети  СЕ (9). 
3. Следва  да бъдат  оценени  сходните  (вариантни ) методи  или модиф­  
икации  на всеки  от трите  валидирани  метода  [EpiSkin  TM (валидирания  
референтен  метод  — ВРМ ), EpiDerm  TM SIT (EPI-200) и SkinEthic  TM 
RHE], предложени  за използване  съгласно  настоящия  метод  за 
изпитване  (МИ), за да се определят  надеждността  и точността  им, 
като се използват  химикали , които  са представителни  за пълната  
скала  на Draize за силата  на дразнене . Когато  оценката  се извършва  
с използването  на 20-те препоръчителни  референтни  химикала  на СЕ 
(таблица  1), предложените  сходни  или модифицирани  методи  следва  да 
имат  стойности  на надеждност  и точност , сравними  с тези, получени  
при валидирания  референтен  метод  (таблица  2) (2) (16). Стойностите  
на надеждност  и точност , които  следва  да бъдат  достигнати , са 
представени  в точки  8—12 от настоящото  допълнение . Включени  са 
некласифицирани  (без категория  по GHS на ООН /Регламент  CLP на 
ЕС) и класифицирани  (категория  2 по GHS на ООН /Регламент  CLP на 
ЕС) химикали  (1), представляващи  различни  химични  класове , така че 
надеждността  и точността  (чувствителността , специфичността  и 
цялостната  точност ) на предложения  метод  да могат  да бъдат  
сравнени  с тези на валидирания  референтен  метод . Надеждността  на 
метода , както  и неговата  способност  правилно  да идентифицира  
дразнещи  химикали  от категория  2 по GHS на ООН /Регламент  CLP 
на ЕС и в зависимост  от регулаторната  рамка , за която  се генерират  
данните , също  и способността  му правилно  да идентифицира  
химикали , които  са без категория  по GHS на ООН /Регламент  CLP на 
ЕС, следва  да бъдат  определени  преди  използването  му за изпитване  на 
нови  изпитвани  химикали . 
4. Тези  СЕ са основани  на СЕ на EC-ECVAM (8) и са актуализирани  в 
съответствие  със системите  за класифициране  и етикетиране  GHS на 
ООН  и Регламент  CLP на ЕС (1) (3). Първоначалните  СЕ бяха  
определени  след завършването  на изследването  за валидиране  (21) и 
бяха  основани  на системата  за класификация  на ЕС, определена  в 
Директива  2001/59/ ЕО на Комисията  от 6 август  2001 г. относно  
двадесет  и осмо  адаптиране  към техническия  прогрес  на Директива  
67/548/ЕИО  на Съвета  за сближаването  на законовите , подзаконовите  
и административните  разпоредби  относно  класификацията , опаковането  
и етикетирането  на опасни  вещества  ( 1 ). СЕ бяха  актуализирани  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 666  
( 1 ) ОВ L 225, 21.8.2001 г., стр. 1.
 поради  приемането  на системата  за класифициране  и етикетиране  GHS 
на ООН  в законодателството  на ЕС (Регламент  CLP на ЕС) (3), което  бе 
осъществено  в периода  между  приключването  на изследването  за 
валидиране  и завършването  на настоящия  МИ (8). Това  актуализиране  
се отнася  предимно  до промени : i) в набора  от референтните  химикали  
на СЕ; и ii) определените  стойности  на надеждност  и точност  (2) (23).  
СТАНДАРТИ  ЗА ЕФЕКТИВНОСТ  ЗА МЕТОДИ  ЗА IN VITRO  
ИЗПИТВАНЕ  ЗА КОЖНО  ДРАЗНЕНЕ  ВЪРХУ  РЕКОНСТРУИРАН  
ЧОВЕШКИ  ЕПИДЕРМИС  (RHE)  
5. СЕ се състоят  от следните  три елемента  (9): 
I) Съществени  елементи  на метода  за изпитване ; 
II) Минимален  списък  на референтните  химикали ; 
III) Определени  стойности  на надеждност  и точност . 
I) Съществени  елементи  на метода  за изпитване  
6. Те се състоят  от съществени  структурни , функционални  и процедурни  
елементи  на валидиран  метод , които  следва  да бъдат  включени  в 
протокола  на предложен  сходен  по своя  механизъм  и функционално  
сходен  или модифициран  метод . Тези  елементи  включват  уникални  
характеристики  на метода , процедурни  подробности  от решаващо  
значение  и мерки  за контрол  на качеството . Придържането  към 
съществените  елементи  на метода  за изпитване  ще спомогне  да се 
гарантира , че предложен  сходен  или модифициран  метод  се основава  
на същите  концепции  като съответния  валидиран  референтен  метод  — 
ВРМ  (9). Съществените  елементи  на метода  за изпитване  са подробно  
описани  в точки  16—21 на МИ и изпитването  следва  да бъде  
проведено  съгласно  следните  условия : 
— общите  условия  (точка  16);  
— функционалните  условия , които  включват : 
— жизнеспособност  (точка  17);  
— бариерна  функция  (точка  18);  
— морфология  (точка  19);  
— възпроизводимост  (точка  20); както  и 
— контрол  на качеството  (точка  21).  
II) Минимален  списък  на референтните  химикали  
7. Референтните  химикали  се използват , за да се определи  дали  
надеждността  и точността  на предложен  сходен  или модифициран  
метод , за който  е доказано , че е достатъчно  структурно  и функц­  
ионално  сходен  с валидирания  референтен  метод  (ВРМ ), или който  
представлява  незначително  изменение  на някой  от трите  валидирани  
метода , са сравними  със или по-добри  от тези на ВРМ  (2) (8) (16) (23). 
20-те препоръчителни  референтни  химикала , посочени  в таблица  1, 
включват  химикали , представляващи  различни  химични  класове  (т.е. 
химични  категории , основани  на функционалните  групи ), и са предста­  
вителни  за пълната  скала  на Draize за силата  на дразнене  (от 
недразнител  до силен  дразнител ). Включените  в този списък  
химикали  включват  10 химикала  от категория  2 по GHS на ООН / 
Регламент  CLP на ЕС и 10 некатегоризирани  химикала , от които  3 
химикала  са от незадължителната  категория  3 по GHS на ООН . 
Съгласно  разглеждания  тук метод  за изпитване  класифицирането  в 
незадължителната  категория  3 се счита  за класифициране  без 
категория . Химикалите , посочени  в таблица  1, са избрани  измежду  
химикалите , използвани  във фазата  на оптимизиране , следваща  
фазата  преди  валидирането , и в изследването  за валидиране  на ВРМ , 
по отношение  на химичната  функционалност  и агрегатното  състояние  
(14) (18). Тези  референтни  химикали  представляват  минималния  брой ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 667
 
химикали , които  следва  да бъдат  използвани  за оценка  на точността  и 
надеждността  на предложен  сходен  или модифициран  метод , но не са 
предназначени  да бъдат  използвани  при разработването  на нови  
методи . Когато  даден  химикал  от списъка  не е на разположение , 
биха  могли  да се използват  други  химикали , за които  са налице  
подходящи  in vivo  референтни  данни , предимно  химикали  измежду  
тези, използвани  във фазата  на оптимизиране , следваща  фазата  преди  
валидирането , и в изследването  за валидиране  на ВРМ . При желание  
към минималния  списък  на референтните  химикали  могат  да бъдат  
прибавени  допълнителни  химикали , които  представляват  други  
химични  класове  и за които  са налице  подходящи  in vivo  референтни  
данни , с цел допълнителна  оценка  на точността  на предложения  метод . 
Таблица  1 
Минимален  списък  на референтните  химикали  за определяне  на стойностите  на точност  и надеждност  за 
сходни  или модифицирани  методи  на RhE за кожно  дразнене  ( 1 ) 
Химикал  CAS номер  Агрегатно  
състояние  Балова  оценка  in 
vivo ВРМ  in vitro  
категория  In vivo  категория  по 
GHS на ООН / 
Регламент  CLP на 
ЕС 
1-бромо -4-хлорбутан  6940-78-9 Течно  0 Категория  2 Без категория  
Диетил  фталат  84-66-2 Течно  0 Без 
категория  Без категория  
Нафтилоцетна  киселина  86-87-3 Твърдо  0 Без 
категория  Без категория  
Алил  феноксиацетат  7493-74-5 Течно  0,3 Без 
категория  Без категория  
Изопропанол  67-63-0 Течно  0,3 Без 
категория  Без категория  
4-метил -тио-бензалдехид  3446-89-7 Течно  1 Категория  2 Без категория  
Метилов  стеарат  112-61-8 Твърдо  1 Без 
категория  Без категория  
Хептил  бутират  5870-93-9 Течно  1,7 Без 
категория  Без категория  
Хексил  салицилат  6259-76-3 Течно  2 Без 
категория  Без категория  
Канелен  алдехид  104-55-2 Течно  2 Категория  2 Без категория  
(Незадължителна  
категория  3) ( 3 ) 
1-деканол  ( 2 ) 112-30-1 Течно  2,3 Категория  2 Категория  2 
Цикламен  алдехид  103-95-7 Течно  2,3 Категория  2 Категория  2 
1-бромхексан  111-25-1 Течно  2,7 Категория  2 Категория  2 
2-хлорометил -3,5-диметил - 
4-метоксипиридин  
хидрохлорид  86604-75-3 Твърдо  2,7 Категория  2 Категория  2 
Ди-н-пропил  дисулфид  ( 2 ) 629-19-6 Течно  3 Без 
категория  Категория  2 
Калиев  хидроксид  (5 % 
воден  разтвор ) 1310-58-3 Течно  3 Категория  2 Категория  2 
Бензенетиол , 5-(1,1- димет­  
илетил )-2-метил  7340-90-1 Течно  3,3 Категория  2 Категория  2 
1-метил -3-фенил -1- 
пиперазин  5271-27-2 Твърдо  3,3 Категория  2 Категория  2 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 668
 
Химикал  CAS номер  Агрегатно  
състояние  Балова  оценка  in 
vivo ВРМ  in vitro  
категория  In vivo  категория  по 
GHS на ООН / 
Регламент  CLP на 
ЕС 
Хептанал  111-71-7 Течно  3,4 Категория  2 Категория  2 
Тетрахлоретилен  127-18-4 Течно  4 Категория  2 Категория  2 
( 1 ) Изборът  на химикалите  се основава  на следните  критерии : i) химикалите  се предлагат  на пазара ; ii) представителни  са за 
пълната  скала  на Draize за силата  на дразнене  (от недразнител  до силен  дразнител ); iii) имат  ясно  определена  химична  
структура ; iv) представителни  са за химичната  функционалност , използвана  в процеса  на валидиране ; и v) нямат  прек­  
омерно  токсичен  профил  (например  канцерогенен  или токсичен  по отношение  на репродуктивната  система ) и разходите  за 
обезвреждането  им не са прекалено  високи . 
( 2 ) Химикали , които  са дразнители  при зайците , но за които  има надеждни  доказателства , че не предизвикват  дразнене  при 
хората  (31) (32) (33). 
( 3 ) По GHS на ООН , не присъства  в Регламент  CLP на ЕС. 
III) Определени  стойности  на надеждност  и точност  
8. За целите  на определяне  на надеждността  и приложимостта  на предл­  
ожените  сходни  или модифицирани  методи , които  подлежат  на транс­  
фериране  между  лабораториите , съответни  тестове  с използването  на 
всичките  20 референтни  химикала , посочени  в таблица  1, следва  да 
бъдат  проведени  в поне  три лаборатории . При все това, ако предложеният  
метод  ще бъде  използван  само  в една  лаборатория , за целите  на 
валидирането  няма  да бъде  изисквано  изпитване  в много  лаборатории . 
От съществено  значение  е обаче  тези изследвания  за валидиране  да 
бъдат  независимо  оценявани  от международно  признати  валидационни  
органи  съгласно  международните  указания  (9). Всички  20 референтни  
химикала  следва  да бъдат  изпитвани  в рамките  на три независими  
изпитвания  във всяка  лаборатория , извършвани  с различни  партиди  на 
тъкани  и на достатъчни  големи  интервали  от време . Всяко  изпитване  
следва  да се състои  от минимум  три едновременно  изпитвани  тъканни  
репликата  за всеки  включен  изпитван  химикал , отрицателни  контроли  
(ОК) и положителни  контроли  (ПК). 
9. Изчисляването  на стойностите  на надеждността  и точността  на предл­  
ожения  метод  следва  да се извърши  при едновременно  отчитане  на 
всички  четири  критерия , посочени  по-долу , като се гарантира , че стой­  
ностите  за надеждност  и приложимост  са изчислени  по предварително  
определен  и последователен  начин . 
1. Само  данните  от провеждането  на пълни  цикли  на изпитвания  
отговарят  на критериите  за изчисляване  на вътрешно - и междула­  
бораторната  вариабилност  и прогнозния  капацитет  (точността ) на 
метода . 
2. Окончателната  класификация  на всеки  референтен  химикал  във всяка  
участваща  лаборатория  следва  да бъде  получена , като се използва  
средната  стойност  на жизнеспособността  по време  на отделно  
проведените  изпитвания  от един  пълен  цикъл  от изпитвания . 
3. Само  данните , получени  за химикали , с които  са проведени  пълни  цикли  
от изпитвания  във всички  участващи  лаборатории , отговарят  на 
критериите  за изчисляване  на междулабораторната  вариабилност  на 
метода . 
4. Изчисляването  на стойностите  на точност  следва  да бъде  извършено  
въз основа  на прогнозите  на отделни  лаборатории , получени  за 20- 
те референтни  химикала  от различните  участващи  лаборатории . 
В този контекст  един  цикъл  от изпитвания  се състои  от три 
независими  изпитвания , извършени  от една  лаборатория  за един  
изпитван  химикал . Пълен  цикъл  от изпитвания  представлява  цикъл  
от изпитвания , извършвани  от една  лаборатория  за един  изпитван  
химикал , когато  всички  три изпитвания  са валидни . Това  означава , 
че всяко  отделно  невалидно  изпитване  прави  невалиден  целия  цикъл  
от изпитвания , състоящ  се от три изпитвания . 
Вътрешнолабораторна  възпроизводимост  
10. Оценката  на вътрешнолабораторната  възпроизводимост  следва  да показва  
съответствие  на класификациите  (категория  2 и без категория  по GHS на 
ООН /Регламент  CLP на ЕС), получени  при различни , независимо  
проведени  изпитвания  на 20-те референтни  химикала  в рамките  на една  
лаборатория , равно  на или по-голямо  (≥) от 90 %.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 669
 
Междулабораторна  възпроизводимост  
11. Оценката  на междулабораторната  възпроизводимост  не е от съществено  
значение , ако предложеният  метод  за изпитване  се използва  единствено  в 
една  лаборатория . За методи , които  подлежат  на трансфериране  между  
лаборатории , съответствието  на класификациите  (категория  2 и без 
категория  по GHS на ООН /Регламент  CLP на ЕС), получени  при 
различни , независимо  проведени  изпитвания  на 20-те референтни  
химикала  препоръчително  между  най-малко  три лаборатории , следва  да 
бъде  равно  на или по-голямо  (≥) от 80 %.  
Прогнозен  капацитет  (точност ) 
12. Точността  (чувствителността , специфичността  и цялостната  точност ) на 
предложения  сходен  или модифициран  метод  следва  да бъде  сравнима  с 
или по-добра  от тази на ВРМ , като се взима  предвид  допълнителната  
информация , свързана  с приложимостта  при видовете , представляващи  
интерес  (таблица  2). Чувствителността  следва  да бъде  равна  на или по- 
голяма  (≥) от 80 % (2) (8) (23). При все това по отношение  на чувствит­  
елността  на предложения  метод  in vitro  е валидно  допълнително  
ограничение  на специфичността , съгласно  което  само  два химикала  от 
категория  2 по класификация  in vivo , 1-деканол  и ди-н-пропил  дисулфид , 
могат  да бъдат  класифицирани  неправилно  като химикали  без категория  
от повече  от една  участваща  лаборатория . Специфичността  следва  да бъде  
равна  на или по-голяма  (≥) от 70 % (2) (8) (23). Не е налице  последващо  
ограничение  по отношение  на специфичността  на предложения  метод  in 
vitro, т.е. всяка  една  участваща  лаборатория  може  да класифицира  
неправилно  който  и да било  химикал  без категория  по класификация  in 
vivo, при условие  че окончателната  специфичност  на метода  за изпитване  
попада  в рамките  на приемливия  интервал . Цялостната  точност  следва  да 
бъде  равна  на или по-голяма  (≥) от 75 % (2) (8) (23). Въпреки  че чувствит­  
елността  на ВРМ , изчислена  за 20-те референтни  химикала , посочени  в 
таблица  1, е равна  на 90 %, определената  минимална  стойност  на чувствит­  
елността , изисквана  за всеки  сходен  или модифициран  метод , за да бъде  
счетен  за валиден , е определена  на 80 %, тъй като както  1-деканол  
(химикал  с гранични  резултати ), така и ди-н-пропил  дисулфид  (химикал  
с погрешно  отрицателни  резултати  при ВРМ ) са известни  като 
непредизвикващи  дразнене  при хората  (31) (32) (33), въпреки  че се идент­  
ифицират  като дразнители  при изпитването  върху  зайци . Тъй като 
моделите  на RhE се основават  на клетки  от човешки  произход , те могат  
да предвидят , че тези химикали  не предизвикат  дразнене  (без категория  по 
GHS на ООН /Регламент  CLP на ЕС). 
Таблица  2 
Изисквани  прогнозни  стойности  за чувствителност , специфичност  и цялостна  
точност  за всеки  сходен  или модифициран  метод , за да бъде  счетен  за валиден  
Чувствителност  Специфичност  Цялостна  точност  
≥ 80 % ≥ 70 % ≥ 75 %  
Критерии  за приемане  на изпитването  
13. Възможно  е едно  или няколко  изпитвания , свързани  с един  или повече  
изпитвани  химикала , да не отговаря (т) на критериите  за приемане  на 
изпитването  за изпитваните  и контролните  химикали  или да не е/са 
приемливо (и) по други  причини . За допълване  на липсващите  данни  
е допустимо  извършването  на максимум  две допълнителни  изпитвания  
за всеки  изпитван  химикал  („повторно  изпитване “). По-точно , тъй като 
в случая  на повторно  изпитване  трябва  да бъдат  едновременно  
изпитвани  и ПК, и ОК, за всеки  изпитван  химикал  могат  да бъдат  
извършени  максимум  две допълнителни  изпитвания . 
14. Възможно  е дори  след  повторно  изпитване  минималният  брой  от три 
валидни  изпитвания , изискван  за всеки  изпитван  химикал , да не бъде  
получен  за всеки  референтен  химикал  във всяка  участваща  
лаборатория , което  води  до матрица  с непълни  данни . В такива  
случаи  следва  да бъдат  изпълнени  едновременно  следните  три 
критерия , за да бъдат  счетени  наборите  от данни  за приемливи : 
1. Всички  20 референтни  химикала  следва  да преминат  през поне  един  
пълен  цикъл  от изпитвания . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 670
 
2. Във всяка  от поне  три участващи  лаборатории  е необходимо  
минимум  85 % от циклите  от изпитвания  да бъдат  пълни  (за 20 
химикала ; т.е. позволени  са 3 невалидни  цикъла  от изпитвания  в 
една  лаборатория ). 
3. Минимум  90 % от всички  възможни  цикли  от изпитвания  от поне  
три лаборатории  е необходимо  да бъдат  пълни  (за 20 химикала , 
изпитвани  в три лаборатории ; т.е. позволени  са общо  6 невалидни  
цикъла  от изпитвания ). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 671
 
Б. 47 МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  НА НЕПРОЗРАЧНОСТ  И ПРОПУСК­  
ЛИВОСТ  НА ГОВЕЖДАТА  РОГОВИЦА  ЗА 
ИДЕНТИФИКАЦИЯ  НА ВЕЩЕСТВА  С КОРОЗИВНО  И 
ДРАЗНЕЩО  ДЕЙСТВИЕ  ВЪРХУ  ОЧИТЕ  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Методът  за изпитване  на непрозрачност  и пропускливост  на 
говеждата  роговица  (НПГР ) е метод  in vitro , който  може  да се 
използва  при определени  обстоятелства  и със специфични  
ограничения  за класифициране  на „вещества  и смеси  с корозивно  
или дразнещо  действие  върху  очите “ (1) (2) (3). За целите  на 
настоящия  метод  за изпитване  като вещества  с дразнещо  действие  
се дефинират  такива , които  предизвикват  лезии  върху  очите  на заек 
и траят  най-малко  21 дни след  прилагането . Въпреки  че не се смята  за 
валиден  като пълен  заместител  на in vivo  теста  върху  заешки  очи, 
методът  НПГР  се препоръчва  да се използва  като част от една  
поетапна  стратегия  за регулаторно  класифициране  и етикетиране  в 
обхвата  на конкретна  област  на приложимост  (4) (5). Изпитваните  
вещества  и смеси  (6) могат  да се класифицират  като корозивни  или 
дразнещи  за очите  без по-нататъшно  изпитване  върху  зайци . 
Вещества , които  показват  отрицателен  резултат , е необходимо  да се 
изпитват  върху  зайци , като се прилага  стратегия  за последователно  
изпитване  както  това е разгледано  в Ръководството  за изпитания  на 
ОИСР  405 (7) ( глава  Б.5 в настоящото  приложение ). 
2. Целта  на този метод  за изпитване  е да се опишат  процедурите , 
използвани  за оценка  на потенциалното  корозивно  или дразнещо  
действие  върху  очите  на изпитваното  вещество , измерени  чрез 
способността  му да индуцира  непрозрачност  и повишена  пропус­  
кливост  върху  изолирана  говежда  роговица . Токсичният  ефект  
върху  роговицата  се измерва  чрез: (i) намаленото  преминаване  на 
светлина  (непрозрачност ), и (ii) повишено  пропускане  на натриев  
флуоресцентен  оцветител  (пропускливост ). Оценките  за непрозрач­  
ността  и пропускливостта  на роговицата  след  прилагане  на 
изпитваното  вещество  се комбинират , за да се получи  In Vitro  
балова  оценка  за дразнещото  действие  (ИВБОДД ), която  се 
използва  за класифициране  според  степента  на дразнещо  действие  
на изпитваното  вещество . 
3. С метода  на изпитване  НПГР  са извършвани  тестове  на вещества  с 
дразнещо  действие  върху  очите , предизвикващи  лезии , които  
преминават  за по-малко  от 21 дни и на вещества  без дразнещо  
действие . Въпреки  това не е направена  официална  оценка  за 
точността  и надеждността  на метода  за изпитване  НПГР  за тези 
категории  вещества . 
4. Определенията  са дадени  в Допълнение  1. 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
5. Този  метод  за изпитване  се базира  на протокола  за метода  за 
изпитване  НПГР  (8) на Междуведомствения  координационен  
комитет  за валидиране  на алтернативни  методи  (ICCVAM), който  бе 
изготвен  след  едно  международно  изследване  за валидиране  (4)(5)(9), 
за което  принос  имаха  Европейският  център  за валидиране  на 
алтернативни  методи  (ECVAM) и Японският  център  за валидиране  
на алтернативни  методи  (JaCVAM). Протоколът  се базира  на 
информация , получена  от Института  за in vitro  науки  (IIVS) и 
протокол  124 на INVITTOX (10), който  е протоколът , използван  за 
изследване  за предварително  валидиране  на анализи  с НПГР , 
проведено  в периода  1997-1998 г. и спонсорирано  от Европейската  
общност . Тези  два протокола  се базират  на методиката  за анализ  на 
НПГР , която  за първи  път се споменава  от Gautheron  et al.  (11).  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 672
 
6. Установените  ограничения  на този метод  за изпитване  се базират  на 
високите  равнища  на неверните  положителни  резултати  за алкохоли  и 
кетони  и високите  равнища  на неверните  отрицателни  резултати  за 
твърди  вещества , отчетени  в базата  данни  за валидиране  (вж. точка  
44) (5). Когато  веществата  от тези химични  и физични  класове  бъдат  
изключени  от базата  данни , точността  на НПГР  навсякъде  в 
системите  за класификация  на ЕС, EPA и Глобалната  система  за 
хармонизиране  на класификацията  на химични  вещества  и смеси  
GHS значително  се подобрява  (5). Според  целта  на този анализ  (т.е. 
да се определят  само  веществата  с корозивно /дразнещо  действие  
върху  очите ) неверните  отрицателни  резултати  не са от критично  
значение , тъй като такива  вещества  се тестват  впоследствие  при 
зайци  или чрез други  съответно  валидирани  in vitro  изпитания  в 
зависимост  от регулаторните  изисквания , като се прилага  стратегия  
за последователно  изпитване  с подход , отчитащ  значимостта  на разл­  
ичните  видове  данни . Освен  това текущата  база данни  за 
валидирането  не позволяваше  да бъде  направена  адекватна  оценка  
на някои  класове  химикали  или продукти  (напр . смеси ). Въпреки  
това изследователите  биха  могли  да използват  този метод  за 
всякакви  видове  изследван  материал  (включително  за смеси ), като 
положителният  резултат  може  да се приеме  за показател  за 
корозивно  или дразнещо  действие  върху  очите . Все пак положителни  
резултати , получени  от алкохоли  или кетони  следва  да се тълкуват  
предпазливо , поради  опасността  от свръхпрогнозиране  на опасност . 
7. Всички  процедури  с говежди  очи и говежда  роговица  следва  да 
съответстват  на приложимите  за изпитателната  лаборатория  
разпоредби  и процедури  за работа  с материали  с животински  
произход , които  включват , но не се ограничават  само  с тъкани  и 
тъканна  течност . Препоръчва  се спазването  на универсалните  
лабораторни  предпазни  мерки  (12).  
8. Едно  ограничение  на метода  за изпитване  е фактът , че въпреки  че той 
отчита  някои  от действията  върху  очите , изследвани  с метода  за 
изследване  на дразнещо  действие  върху  заешки  очи, и до известна  
степен  отчита  и силата  на това действие , той не взема  под внимание  
уврежданията  на конюнктивата  и ириса . Също  така, въпреки  че с 
анализа  на НПГР  не може  да се направи  оценка  per se  на обрат­  
имостта  на лезиите  върху  роговицата , бе предложено  въз основа  на 
изследванията  върху  заешки  очи оценката  за първоначалната  
дълбочина  на увреждането  на роговицата  да се използва  за 
разграничаването  на необратимото  от обратимото  действие  (13). В 
заключение , НПГР  не позволява  да се направи  оценка  на потенциала  
за системно  токсично  действие , свързано  с експонирането  на очите . 
9. Продължават  усилията  да се охарактеризират  допълнително  ползата  и 
ограниченията  на анализа  за НПГР  за определянето  на вещества  със 
слабо  или без дразнещо  действие  (вж. също  точка  45). Приканват  се 
потребителите  да предоставят  на валидиращите  организации  проби  
и/или данни  за официално  оценяване  на възможните  бъдещи  прил­  
ожения  на метода  за изпитване  НПГР , включително  и за определяне  
на вещества  със слабо  или без дразнещо  действие . 
10. Всяка  лаборатория , която  за първи  път започва  да извършва  такива  
анализи , следва  да използва  опитните  химикали , посочени  в 
Допълнение  2. Лабораториите  могат  да използват  тези химикали  за 
доказване  на своята  техническа  компетентност  за прилагане  на метода  
за изпитване  НПГР  преди  предаване  на данните  от анализа  за НПГР  за 
целите  на регулаторното  класифициране  според  степента  на опасност . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
11. Методът  за изпитване  НПГР  е органотипен  модел , който  осигурява  
краткотрайно  поддържане  на нормалната  физиологична  и биохимична  
функция  на говеждата  роговица  in vitro . При този метод  за изпитване  
увреждането , причинено  от изпитваното  вещество , се оценява  
посредством  количествени  измервания  на измененията  в непрозрач­  
ността  и пропускливостта  на роговицата , извършвани  съответно  с 
уред  за измерване  на непрозрачността  и спектрофотометър  за 
видимата  светлина . Двете  измервания  се използват  за изчисляване  
на In Vitro  балова  оценка  за дразнещото  действие  (ИВБОДД ), която  
се използва  за in vitro  категоризиране  според  класификацията  по 
степен  на опасност  от дразнещо  действие  за прогнозиране  на in vivo  
потенциала  за дразнещо  действие  върху  очите  на изпитваното  
вещество  (вж. критериите  за решението ). ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 673
 
12. За метода  за изпитване  НПГР  се използва  изолирана  роговица  от 
очите  на прясно  заклан  едър  рогат  добитък . Непрозрачността  на 
роговицата  се измерва  количествено  чрез количеството  на свет­  
лопреминаването  през роговицата . Пропускливостта  се измерва  
количествено  като количеството  натриев  флуоресцентен  оцветител , 
което  преминава  през цялата  дебелина  на роговицата , отчетено  в 
средата  в задното  отделение . Изпитваното  вещество  се нанася  върху  
епителиалната  повърхност  на роговицата  чрез добавяне  в предното  
отделение  на държателя  за роговицата . В Допълнение  3 са дадени  
описание  и схема  на държател  за роговицата , използван  за анализа  
за НПГР . Държатели  за роговица  могат  да се набавят  от различни  
източници  на пазара  или да се изработят . 
Източник  и възраст  на говеждите  очи и избор  на животински  вид 
13. Едрият  рогат  добитък , който  се изпраща  за клане , обикновено  се 
използва  за консумация  от човека  или за други  търговски  цели . 
Като  източник  на роговица  за целите  на метода  за изпитване  НПГР  
се използват  само  здрави  животни , смятани  за подходящи  за 
включване  в хранителната  верига  на човека . Тъй като едрият  рогат  
добитък  може  да бъде  с различно  тегло  според  породата , възрастта  и 
пола , няма  изискване  за препоръчително  тегло  на животните  при 
клане . 
14. Когато  се използват  очи от различни  по възраст  животни  могат  да се 
получат  разлики  в размерите  на роговицата . Роговицата  на едър  рогат  
добитък  на възраст  над осем  години  обикновено  е с хоризонтален  
диаметър  > 30,5 mm и дебелина  в средата  на роговицата  (CCT) 
≥ 1 100 μm, докато  роговица  с хоризонтален  диаметър  < 28,5 mm и 
дебелина  в средата  на роговицата  CCT < 900 μm обикновено  се 
получава  от едър  рогат  добитък  на възраст  под пет години  (14). 
Поради  това обикновено  не се използват  очи от едър  рогат  добитък  
на възраст  над 60 месеца . Обичайно  е да не се използват  очи от едър  
рогат  добитък  на възраст  под 12 месеца , тъй като тогава  те все още са 
в развитие  и дебелината  и диаметърът  на роговицата  са значително  
по-малки  от отчетените  за очи на възрастен  добитък . Все пак се 
допуска  да се използва  роговица  от млади  животни  (напр . на 
възраст  от 6 до 12 месеца ), тъй като това дава някои  предимства , 
като по-лесното  набавяне , по-малкия  възрастов  диапазон  и 
намалената  опасност , свързана  с потенциалната  възможност  
работещите  да бъдат  заразени  със спонгиформна  енцефалопатия  по 
едрия  рогат  добитък  (15). Тъй като ще бъде  от полза  да продължи  
оценката  на ефекта  от размерите  или дебелината  на роговицата  върху  
реакцията  срещу  вещества  с корозивно  и дразнещо  действие , 
потребителите  се приканват  да докладват  за предполагаемата  
възраст  и/или тегло  на животните , от които  се доставя  използваната  
в изследването  роговица . 
Събиране  и транспортиране  на очите  до лабораторията  
15. Очите  се събират  от работещите  в кланицата . За да се сведат  до 
минимум  механичните  и други  видове  увреждания  на очите , те 
следва  да се извадят  възможно  най-скоро  след  настъпване  на 
смъртта . За да се избегне  излагането  на очите  на въздействието  на 
вещества  с потенциално  дразнещо  действие , работещите  в кланицата  
не трябва  да използват  почистващи  препарати  при миенето  на главите  
на животните . 
16. Очите  следва  да бъдат  изцяло  потопени  в балансиран  солен  разтвор  
на Ханкс  (HBSS) в съд с подходящи  размери  и транспортирани  до 
лабораторията  по начин , който  позволява  да бъдат  сведени  до 
минимум  развалянето  и/или бактериалното  замърсяване . Тъй като 
очите  се вземат  по време  на кланичния  процес , те може  да са 
покрити  с кръв  и други  биологични  вещества , включително  
бактерии  и други  микроорганизми . Поради  това е важно  да се 
осигури  свеждане  до минимум  на риска  от замърсяване  (напр . като 
съдът  с очите  се постави  върху  мокър  лед, като към балансирания  
солен  разтвор  на Ханкс , в който  се съхраняват  очите  по време  на 
транспорта , се добавят  антибиотици  (напр . 100 IU/mL пеницилин  и 
100 mg/mL стрептомицин ]). ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 674
 
17. Интервалът  от време  между  вземането  на очите  и използването  на 
роговицата  за метода  НПГР  следва  да бъде  сведен  до минимум  (обик­  
новено  вземането  и използването  става  в рамките  на един  и същ ден) 
и следва  убедително  да се покаже , че не компрометира  резултатите  от 
анализа . Тези  резултати  се базират  на критериите  за подбор  на очите , 
както  и на реакцията  на положителната  и отрицателната  контрола . 
Всички  очи, използвани  за анализа , следва  да бъдат  от една  и съща  
група  очи, взета  през даден  ден. 
Критерии  за избор  на очи, използвани  за метода  НПГР  
18. След  пристигане  в лабораторията  очите  се оглеждат  внимателно  за 
дефекти , включително  за повишена  непрозрачност , драскотини  и 
неоваскуларизация . Използват  се само  роговици  от очи без такива  
дефекти . 
19. Качеството  на всяка  роговица  се оценява  също  и на по-късните  етапи  
в анализа . Роговици  с непрозрачност  по-голяма  от седем  единици  
(забележка : уредът  за измерване  на непрозрачност  следва  да бъде  
калибриран  с еталони  за непрозрачност , използвани  за установяване  
на единиците  непрозрачност , вж. Допълнение  3), след  първия  един  
час време  за уравновесяване  се изхвърлят . 
20. Всяка  третирана  група  (изпитвано  вещество , съответни  отрицателна  и 
положителна  контроли ) се състои  от минимум  три очи. За отрицат­  
елната  контрол a в анализа  за НПГР  се използват  три роговици . Тъй 
като всички  роговици  са изрязани  от цялата  очна  ябълка  и поставени  
в отделенията  за роговица , съществува  вероятност  стойностите  за 
непрозрачност  и пропускливост  за отделните  роговици  (включително  
отрицателната  контрола ) да бъдат  повлияни  в резултат  на човешката  
намеса  при манипулациите . Освен  това стойностите  за непрозрачност  
и пропускливост  от отрицателната  контрола  се използват  за 
коригиране  на стойностите  за непрозрачност  и пропускливост  на 
роговицата  от изпитваната  проба  и от положителната  контрола  – 
третираната  роговица  при изчисляването  на In Vitro  балова  оценка  
за дразнещото  действие  (ИВБОДД ). 
ПРОЦЕДУРА  
Подготовка  на очите  
21. Върху  свободна  от дефекти  роговица  се прави  разрез , така че от 
склерата  да остане  пръстен  от 2 до 3 мм за улесняване  на 
последващите  манипулации , като се внимава  да се избягва  
увреждане  на епителия  и ендотелия  на роговицата . Изолираните  
роговици  се поставят  в специално  изработени  държатели , които  
имат  предно  и задно  отделение , които  са съответно  откъм  епители­  
алната  и ендотелиалната  страна  на роговицата . Двете  отделения  са 
пълни  до преливане  с предварително  затоплена  среда  ЕМЕМ  
(Eagle's Minimum Essential Medium) ( първо  задното  отделение ), като 
се внимава  да няма  мехури . След  това уредът  се уравновесява  при 
32 ± 1 °C в продължение  на най-малко  един  час, за да може  
роговицата  да се уравновеси  със средата  и да се достигне  до 
нормална  метаболитна  дейност  в степента , в която  това е възможно  
(приблизителната  температура  на повърхността  на роговицата  in vivo  
е 32 °C).  
22. След  периода  на уравновесяване  в двете  отделения  се добавя  прясна  
предварително  затоплена  среда  ЕМЕМ  и се отчитат  базовите  
стойности  за непрозрачност  за всяка  роговица . Роговици  с 
макроскопични  тъканни  увреждания  (напр . драскотини , пигментация , 
неоваскуларизация ) или непрозрачност  > 7 единици  се изхвърлят . 
Изчислява  се средната  непрозрачност  за всички  уравновесени  
роговици . Най-малко  три роговици  със стойности  за непрозрачност  
близки  до средната  за всички  роговици  се избират  за отрицателна  
контрола  (или контрола  само  с разтворител ). Останалите  роговици  
се разпределят  на групи  за опитно  третиране  и за положителна  
контрола . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 675
 
23. Тъй като топлинният  капацитет  на водата  е по-висок  от този на въздуха , 
водата  осигурява  по-стабилни  температурни  условия  за инкубация . 
Поради  това, препоръчва  се да се използва  водна  баня  за поддържане  
на температура  от 32 ± 1 °C на държателя  и неговото  съдържание . От 
друга  страна , могат  да се използват  и въздушни  инкубатори , като се 
вземат  необходимите  мерки  температурата  да се поддържа  постоянна  
(напр . като се затоплят  предварително  държателят  и средата ). 
Прилагане  на изпитваното  вещество  
24. Използват  се два различни  протокола  за третиране  – един  за течности  
и повърхностно  активни  вещества  (твърди  или течни ) и един  за 
повърхностно  неактивни  твърди  вещества . 
25. Течностите  се изпитват  неразредени , докато  повърхностно  активните  
вещества  се изпитват  при концентрации  от 10 % w/v в 0,9 % разтвор  
на натриев  хлорид , дестилирана  вода  или друг  разтворител , за който  е 
доказано , че не влияе  неблагоприятно  върху  тестовата  система . 
Полутвърди  вещества , кремообразни  вещества  и парафините  обик­  
новено  се изпитват  във вид на течности . За използване  на други  
концентрации  при разреждане  следва  да се направи  подходяща  
аргументация . Роговицата  се експонира  на течностите  или 
повърхностно  активните  вещества  в продължение  на 10 минути . 
Използването  на друга  продължителност  на експозицията  следва  да 
бъде  придружено  от подходяща  научна  обосновка . 
26. Повърхностно  неактивните  твърди  вещества  обикновено  се изпитват  
във вид на разтвори  или суспензии  при 20 % концентрация  в 0,9 % 
разтвор  на натриев  хлорид , дестилирана  вода  или друг  разтворител , за 
който  е доказано , че не влияе  неблагоприятно  върху  тестваната  система . 
При някои  обстоятелства  и подходящо  научно  обосноваване  твърдите  
вещества  могат  да се изпитват  и в чист  вид чрез пряко  прилагане  върху  
повърхността  на роговицата , като се използва  методът  с отворено  
отделение  (вж. точка  29). Роговицата  се експонира  на твърдите  
вещества  в продължение  на четири  часа, но както  и при течностите  и 
повърхностно  активните  вещества , при подходяща  научна  обосновка  
може  да се приложи  и друга  продължителност  на експозицията . 
27. В зависимост  от физичната  природа  и химичните  характеристики  на 
изпитваното  вещество  (напр . твърди  вещества , течности , вискозни  
или невискозни  течности ) могат  да се използват  различни  методи  
на третиране . Критичният  фактор  е да се осигури  изпитваното  
вещество  да покрива  добре  епителиалната  повърхност  и да бъде  
подходящо  отстранено  при етапите  на измиване . Когато  изпитваните  
вещества  са невискозни  или слабо  вискозни  течности , обикновено  се 
използва  методът  със затворено  отделение , а когато  изпитваните  
вещества  са полувискозни  и вискозни  течности  и твърди  вещества  в 
чист  вид — обикновено  се използва  методът  с отворено  отделение . 
28. При метода  със затворено  отделение  през отворите  за дозиране  върху  
горната  повърхност  в предното  отделение  се въвежда  достатъчно  
количество  от изпитваното  вещество  (750 μL), така че да покрие  епит­  
елиалната  страна  на роговицата , след  което  по време  на експозицията  
отворите  се затварят  със запушалките  на отделението . Важно  е да се 
осигури  всяка  роговица  да се експонира  на изпитваното  вещество  в 
продължение  на съответния  период  от време . 
29. При метода  с отворено  отделение  пръстенът  за затваряне  на прозореца  и 
стъкленият  прозорец  се отстраняват  от предното  отделение  преди  
третирането . Контролното  или изпитваното  вещество  (750 μL или 
такова  количество  от изпитваното  вещество , което  е достатъчно  за да 
покрие  напълно  роговицата ) се прилагат  непосредствено  върху  епители­  
алната  повърхност  на роговицата , като се използва  микропипета . Ако е 
трудно  изпитваното  вещество  да се вземе  с пипета , то може  да се зареди  
под налягане  в нагнетателна  пипета  за улесняване  на дозирането . Краят  
на нагнетателната  пипета  се поставя  в отворения  край  на спринцовката , 
за да може  материалът  да бъде  зареден  в нагнетателния  край  под 
налягане . Едновременно  с това буталото  на спринцовката  се натиска  
докато  буталото  на пипетата  се изтегля  нагоре . Ако на върха  на 
пипетата  се появят  мехурчета  въздух , изпитваният  материал  се изважда  
(отстранява ) и процесът  се повтаря , докато  краят  се запълни  без 
въздушни  мехури . Ако е необходимо , може  да се използва  нормална  
спринцовка  (без игла), тъй като тя позволява  да се измери  точно  
обемът  на изпитваното  вещество  и по-лесното  му нанасяне  по епители­  
алната  повърхност  на роговицата . След  дозирането  стъкленият  прозорец  
се поставя  отново  на предното  отделение , за да се затвори  системата . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 676
 
Инкубация  след  експозиция  
30. След  изтичане  на времето  за експозиция , изпитваното  вещество , 
отрицателното  контролно  вещество  или положителното  контролно  
вещество  се отстраняват  от предното  отделение  и епителият  се 
измива  със средата  EMEM (Eagle's Minimum Essential Medium) 
(съдържаща  червен  фенол ) най-малко  три пъти  (или докато  не 
останат  видими  следи  от изпитваното  вещество ). Средата  със 
съдържание  на червен  фенол  се използва  за измиване , защото  може  
да се наблюдава  промяната  на цвета  на червения  фенол , за да се 
определи  ефективността  на измиващите  алкални  или киселинни  
материали . Роговиците  се измиват  повече  от три пъти  ако 
червеният  фенол  продължава  да променя  цевта  си (до жълто  или 
лилаво ) или ако още има видими  следи  от изпитваното  вещество . 
След  като средата  бъде  изчистена  от изпитваното  вещество , 
роговиците  се измиват  за последен  път със средата  EMEM ( без 
червен  фенол ). EMEM ( без червен  фенол ) се използва  за последното  
измиване , за да се осигури  отстраняването  на червения  фенол  от 
предното  отделение  преди  да се направи  измерването  за 
непрозрачност . След  това предното  отделение  се пълни  отново  с 
прясна  среда  ЕМЕМ  без червен  фенол . 
31. При течности  или повърхностно  активни  вещества  след  измиването  
роговиците  се подлагат  на инкубация  за още два часа при 32 ± 1 °C. 
В някои  случаи  може  да е полезно  да се удължи  следекспозиционното  
време  и решението  за това може  да се вземе  според  индивидуалния  
случай . Роговици , третирани  с твърди  вещества  се измиват  старателно  
в края  на четиричасовата  експозиция , но не изискват  допълнителна  
инкубация . 
32. В края  на периода  на следекспозиционна  инкубация  за течности  и 
повърхностно  активни  вещества  и в края  на четиричасовата  
експозиция  за повърхностно  неактивни  твърди  вещества  се отчитат  
непрозрачността  и пропускливостта  на всяка  роговица . Също  така се 
прави  визуален  оглед  на всяка  роговица  и се записват  съответните  
наблюдения  (напр . обелване  на тъканта , остатъци  от изпитваното  
вещество , неравномерна  непрозрачност ). Тези  наблюдения  могат  да 
бъдат  важни , тъй като могат  да се отразят  като колебания  в 
отчетените  стойности  от уреда  за измерване  на непрозрачност . 
Контроли  
33. Във всеки  експеримент  се включват  паралелни  отрицателни  или 
контроли  „разтворител /носител “ и положителни  контроли . 
34. Когато  се изпитва  течно  вещество  със 100 % концентрация , в метода  
за изпитване  НПГР  се включва  паралелна  отрицателна  контрола  
(напр . 0,9 % разтвор  на натриев  хлорид  или дестилирана  вода ), за 
откриване  на неспецифични  промени  в тестовата  система  и за 
осигуряване  на базова  линия  за крайните  резултати  от анализа . 
Също  така, тя осигурява  проверка , че не се причинява  дразнителна  
реакция  от неподходящи  условия  при провеждания  опит . 
35. Когато  се изпитва  разредена  течност , повърхностно  активно  вещество  
или твърдо  вещество , в метода  за изпитване  НПГР  се включва  
паралелна  контролна  група  „разтворител /носител “ за откриване  на 
неспецифични  промени  в тестовата  система  и за осигуряване  на 
базова  линия  за крайните  резултати  от анализа . Може  да се 
използва  само  разтворител /носител , за който  е доказано , че не влияе  
неблагоприятно  върху  тестовата  система . 
36. Във всеки  експеримент  се включва  известно  вещество  с дразнещо  
действие  върху  очите  като паралелна  положителна  контрола  за 
удостоверяване  индуцирането  на съответната  реакция . Тъй като при 
този метод  за изпитване  анализът  на НПГР  се използва  за определяне  
на вещества  с корозивно  или силно  дразнещо  действие , най-добре  би 
било  положителната  контрола  да е еталонно  вещество , което  при този 
метод  за изпитване  индуцира  остра  реакция . Все пак, за да се осигури  
да може  да се направи  оценка  на измененията  във времето  на 
реакцията  на положителната  контрола , силата  на реакцията  срещу  
веществото  с дразнещо  действие  не следва  да е прекомерно  голяма . 
37. Примери  за положителни  контроли  за течни  изпитвани  вещества  са 
диметилформамид  или 1 % натриева  основа . Пример  за положителна  
контрола  за твърди  изпитвани  вещества  е 20 % (w/v) имидазол  в 
0,9 % разтвор  на натриев  хлорид . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 677
 
38. Сравнителните  контролни  вещества  са от полза  за оценката  на поте­  
нциала  за дразнещо  действие  върху  очите  на неизвестни  химикали  от 
конкретен  химичен  или продуктов  клас, или за оценка  на съответния  
потенциал  за дразнещо  действие  на вещества  с дразнещо  действие  
върху  очите  в рамките  на конкретен  диапазон  от реакции  на дразнене . 
Измерени  крайни  резултати  
39. Непрозрачността  се определя  от количеството  на светлопремина­  
ването  през роговицата . Непрозрачността  на роговицата  се измерва  
количествено  с помощта  на уред  за измерване  на непрозрачност , при 
което  се получават  стойности  за непрозрачността , измерени  по 
непрекъсната  скала . 
40. Пропускливостта  се определя  от количеството  натриев  флуорес­  
цеинов  оцветител , което  прониква  през всички  клетъчни  слоеве  на 
роговицата  (т.е. от епителия  по външната  повърхност  на роговицата  
до ендотелия  по вътрешната  повърхност  на роговицата ). 1 mL 
натриев  флуоресцентен  оцветител  (4 или 5 mg/mL когато  се 
изпитват  съответно  течности  и повърхностно  активни  твърди  
вещества  или повърхностно  неактивни  твърди  вещества ) се поставя  
в предното  отделение  на държателя  за роговицата , в което  се 
помества  епителиалната  страна  на роговицата , докато  задното  
отделение , в което  се помества  ендотелиалната  страна  на роговицата  
се пълни  с прясна  среда  EMEM (Eagle’s Minimum Essential Medium). 
След  това държателят  се инкубира  в хоризонтално  положение  в 
продължение  на 90 ± 5 минути  при 32 ± 1 °C. Количеството  
натриев  флуоресцеин , което  преминава  в задното  отделение , се 
измерва  количествено  с помощта  на UV/VIS спектрофотометър . 
Спектрофотометричните  измервания , съответстващи  на 490 nm, се 
отчитат  като стойности  за оптичната  плътност  (OD  490 ) или за 
абсорбцията , които  се измерват  по непрекъсната  скала . Стойностите  
за пропускливостта  на флуоресцеина  се определят  като се използват  
стойностите  OD  490 на базата  на спектрофотометър  за видимата  
светлина , използващ  стандартен  ход на светлината  от 1 cm.  
41. Друга  възможност  е да се използва  четец  на 96-гнездна  микротитърна  
плоча , при условие  че: (i) може  да се определи  линейният  диапазон  на 
четеца  с плочата  за определяне  на OD  490 стойностите  за флуорес­  
цеина ; и (ii), в 96-гнездната  плоча  се постави  точният  обем  проби  с 
флуоресцеин , за да се получат  стойности  OD  490 , еквивалентни  на 
еталонната  дължина  на хода  на светлината  от 1 cm (това може  да 
изисква  гнездата  да са пълни  докрай  [обикновено  360mL]).  
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Оценка  на данните  
42. След  като стойностите  за непрозрачност  и средна  пропускливост  
(OD  490 ) бъдат  коригирани  спрямо  фоновата  непрозрачност  и стой­  
ностите  за пропускливост  OD  490 на отрицателната  контрола , 
средните  стойности  за непрозрачност  и пропускливост  OD  490 за 
всяка  третирана  група  се свързват  в една  емпирично  получена  
формула  за изчисляване  на In Vitro  баловата  оценка  за дразнещото  
действие  (ИВБОДД ) за всяка  третирана  група  както  следва : 
ИВБОДД  = средната  стойност  на непрозрачност  + (15 × средната  
стойност  на пропускливост  OD  490 ) 
Sina et al.  (16) са докладвали , че тази формула  е изведена  по време  на 
вътрешни  и междулабораторни  изследвания . Получените  данни  в 
едно  многолабораторно  изследване  за поредица  от 36 съединения  са 
били  подложени  на мултивариантен  анализ  за определяне  на 
уравнението , което  най-добре  се вписва  между  in vivo  и in vitro  
данните . Този  анализ  е извършен  от учени  в две различни  
компании , които  извеждат  почти  еднакви  формули . 
43. Стойностите  за непрозрачност  и пропускливост  следва  да се оценяват  
и независимо , за да се определи  дали  дадено  изпитвано  вещество  
индуцира  корозивност  или силно  дразнене  само  чрез един  от двата  
крайни  резултата  (вж. критериите  за решението ). ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 678
 
Критерии  за формулирането  на решение  
44. Вещество , което  индуцира  ИВБОДД  ≥ 55,1 се определя  като вещество  
с корозивно  или силно  дразнещо  действие . Както  бе споменато  в 
точка  1, когато  изпитваното  вещество  не се определи  като вещество  
с корозивно  или силно  дразнещо  действие  върху  очите , следва  да 
бъдат  проведени  допълнителни  изпитания  за целите  на класиф­  
ицирането  и етикетирането . Методът  за изпитване  НПГР  е с обща  
точност  от 79 % (113/143) до 81 % (119/147), неверни  положителни  
резултати  19 % (20/103) до 21 % (22/103), и неверни  отрицателни  
резултати  16 % (7/43) до 25 % (10/40), в сравнение  с данните  от in 
vivo метода  за изпитване  със заешки  очи, класифицирани  по 
системите  за класифициране  на EPA (1), ЕU (2), или GHS (3). 
Когато  от базата  данни  бъдат  изключени  вещества  от определени  
химични  (напр . алкохоли , кетони ) или физични  (напр . твърди  
вещества ) класове , точността  на метода  НПГР  в системите  за класиф­  
ициране  на ЕU, EPA, и GHS варира  от 87 % (72/83) до 92 % (78/85), 
неверните  положителни  резултати  варират  от 12 % (7/58) до 16 % 
(9/56), а неверните  отрицателни  резултати  — от 0 % (0/27) до 12 % 
(3/26).  
45. Дори  когато  дадено  изпитвано  вещество  не получи  класификация  
като вещество  с корозивно  или силно  дразнещо  действие  върху  
очите , данните  от анализа  за НПГР  могат  да бъдат  от полза  
съвместно  с данните  от in vivo  изпитанията  със заешки  очи или от 
съответно  валидирани  in vitro  изпитания  за по-нататъшната  оценка  на 
ползата  и ограниченията  на метода  за изследване  НПГР  за определяне  
на вещества  без силно  дразнещо  действие  и без дразнещо  действие  (в 
процес  на разработване  е Ръководство  за използването  на in vitro  
метод  за изпитване  за токсично  действие  върху  очите ). 
Критерии  за приемане  на изпитанието  
46. Едно  изпитание  се смята  за приемливо  когато  положителната  
контрола  дава оценка  ИВБОДД , попадаща  в границите  между  две 
стандартни  отклонения  от текущата  средна  стойност  за предишни  
изследвания , която  се актуализира  най-малко  на всеки  три месеца , 
или всеки  път когато  в лаборатории , в които  рядко  се провеждат  
изпитания  (напр . по-рядко  от веднъж  месечно ), бъде  проведено  
приемливо  изпитание . Реакциите  от отрицателната  контрола  или от 
контролата  „разтворител /носител “ следва  да дават  резултати  със 
стойности  за непрозрачност  и пропускливост , които  са по-ниски  от 
установените  горни  граници  за стойностите  за фонова  непрозрачност  
и пропускливост  за говежда  роговица , третирана  със съответната  
отрицателна  контрола  или контрола  „разтворител /носител “. 
Доклад  за теста  
47. Докладът  за теста  следва  да включва  следната  информация , когато  тя 
се отнася  за провеждането  на изпитанието : 
Изпитвани  и контролни  вещества  
Наименование (-я) на химикала , като например  структурното  наиме­  
нование , използвано  от Службата  CAS, следвано  от други  наиме­  
нования , ако са известни  такива  наименования ; 
Регистрационен  номер  CAS (RN), ако е известен ; 
Чистота  и състав  на веществото  или сместа  (в тегловни  проценти ), 
доколкото  се разполага  с такава  информация ; 
Физикохимични  свойства , като например  физично  състояние , 
летливост , киселинност , устойчивост , химичен  клас, водоразт­  
воримост , отнасящи  се до проведеното  изследване ; 
Обработка  на изпитваните /контролни  вещества  преди  изпитанието , 
ако се прилага  (напр . затопляне , смилане ); 
Устойчивост , ако е известна . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 679
 
Информация  за финансиращото  лице  и за изпитателната  
лаборатория  
Име и адрес  на финансиращото  лице , на изпитателната  лаборатория  и 
на ръководителя  на изследването ; 
Идентификация  на източника  на очите  (напр . кланицата , от която  са 
взети ); 
Условия  на съхранение  и транспорт  на очите  (напр . дата и час на 
вземане , период  от време  преди  започване  на изпитанието , среда  и 
температурни  условия , в които  са транспортирани , използвани  антиб­  
иотици ); 
Ако са налични , специфичните  характеристики  на животните , от 
които  са взетите  очи (напр . възраст , пол, тегло  на животното  - донор ). 
Аргументация  на използваните  методи  за изпитване  и протокол  
Адекватност  на метода  за изпитване  
Процедурата , използвана  за осигуряване  на адекватност  (напр . 
точност  и надеждност ) на метода  за изпитване  във времето  (напр . 
периодично  изпитване  на опитни  вещества , използване  на отриц­  
ателни  и положителни  контролни  данни  от предишни  изпитания ). 
Критерии  за приемане  на изпитанието  
Приемливи  съответни  положителни  и отрицателни  контролни  
диапазони , основани  на данни  от предишни  изпитания ; 
Ако са приложими , приемливи  съответни  сравнителни  контролни  
диапазони , основани  на данни  от предишни  изпитания . 
Тестови  условия  
Описание  на използваната  тестова  система ; 
Вид на използвания  държател  за роговицата ; 
Информация  за калибровката  на уредите , използвани  за измерване  на 
непрозрачност  и пропускливост  (напр . уред  за измерване  на 
непрозрачност  и спектрофотометър ); 
Информация  за използваните  говежди  роговици , включително  
декларация  за качеството  им; 
Подробности  за използваната  процедура  за изпитване ; 
Използвани  концентрации  на изпитваното  вещество ; 
Описание  на евентуални  модификации  на процедурата  за изпитване ; 
Позоваване  на данни  от предишни  изпитания  на модела  (напр . отриц­  
ателни  и положителни  контроли , опитни  вещества , сравнителни  
контролни  вещества ); 
Описание  на използваните  критерии  за оценка . 
Резултати  
Таблици  с данни  за отделни  изпитвани  проби  (напр . стойности  за 
непрозрачност  и OD  490 и изчислени  оценки  ИВБОДД  за изпитваното  
вещество  и положителните , отрицателните  и сравнителни  контроли  
(ако са включени ), докладвани  в табличен  вид, включително  данни  
от повторни  експерименти , когато  е приложимо , и средни  стойности  
± стандартното  отклонение  за всеки  експеримент ); 
Описание  на други  наблюдавани  ефекти . 
Обсъждане  на резултатите  
Заключение  
ЛИТЕРАТУРА  
(1) U.S. EPA (1996). Label Review Manual: 2nd Edition. EPA737-B- 
96-001. Washington, DC: U.S. Environmental Protection Agency.  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 680
 
(2) Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  парламент  и на 
Съвета  от 16 декември  2008 г. относно  класифицирането , 
етикетирането  и опаковането  на вещества  и смеси , за 
изменение  и за отмяна  на директиви  67/548/ЕИО  и 1999/45/EC 
и за изменение  на Регламент  (ЕО) № 1907/2006. ОВ L 353, 
31.12.2008 г., стр. 1. 
(3) UN (2007). Globally Harmonized System of Classification and 
Labelling of Chemicals (GHS). Second revised edition, New York 
& Geneva: United Nations Publications, 2007. На разположение  на 
адрес : 
[http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/ ­
02files_e.html]  
(4) ESAC (2007). Statement on the conclusion of the ICCVAM retros ­
pective study on organotypic  in vitro  assays as screening tests to 
identify potential ocular corrosives and severe eye irritants. На разп­  
оложение  на адрес : 
[http://ecvam.jrc.it/index.htm]  
(5) ICCVAM (2007). Test Method Evaluation Report -  In Vitro  Ocular 
Toxicity Test Methods for Identifying Ocular Severe Irritants and 
Corrosives. Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative Methods (ICCVAM) and the National Toxicology Program (NTP) Interagency Centre for the Evaluation of Alternative 
Toxicological Methods (NICEATM). NIH Publication No.: 07-4517. 
На разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ocu_tmer.htm]  
(6) Регламент  (ЕО) № 1907/2006 на Европейския  парламент  и на 
Съвета  от 18 декември  2006 г. относно  регистрацията , 
оценката , разрешаването  и ограничаването  на 
химикали  (REACH), за създаване  на Европейска  агенция  по 
химикали , за изменение  на Директива  1999/45/ ЕО и за отмяна  
на Регламент  (ЕИО ) № 793/93 на Съвета  и Регламент  (ЕО) 
№ 1488/94 на Комисията , както  и на Директива  76/769/ЕИО  на 
Съвета  и директиви  91/155/ ЕИО , 93/67/ЕИО , 93/105/ ЕО и 
2000/21/ЕО на Комисията . ОВ L 396, 30.12.2006 г., стр. 1. 
(7) OECD (2002). Test Guideline 405. OECD Guideline for Testing of 
Chemicals. Acute eye irritation/corrosion. На разположение  на 
адрес : 
[http://www.oecd.org/document/40/ ­
0,2340,en_2649_34377_37051368_1_1_1_1,00.htm l]  
(8) ICCVAM (2007). ICCVAM Recommended BCOP Test Method 
Protocol. In: ICCVAM Test Method Evaluation Report -  In Vitro  
Ocular Toxicity Test Methods for Identifying Ocular Severe Irritants 
and Corrosives. Interagency Coordinating Committee on the Vali ­
dation of Alternative Methods (ICCVAM) and the National Toxi ­
cology Program (NTP) Interagency Centre for the Evaluation of Alternative Toxicological Methods (NICEATM). NIH Publication 
No.: 07-4517. На разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ocu_tmer.htm]  
(9) ICCVAM. (2006). Current Status of  In Vitro  Test Methods for Iden ­
tifying Ocular Corrosives and Severe Irritants: Bovine Corneal 
Opacity and Permeability Test Method. NIH Publication No.: 06- 4512. Research Triangle Park: National Toxicology Program. На 
разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ ­
ocu_brd_ice.htm]  
(10) INVITTOX (1999). Protocol 124: Bovine Corneal Opacity and 
Permeability Assay – SOP of Microbiological Associates Ltd. 
Ispra, Italy: European Centre for the Validation of Alternative 
Methods (ECVAM).  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 681
 
(11) Gautheron, P., Dukic, M., Alix, D. and Sina, J.F. (1992). Bovine 
corneal opacity and permeability test: An  in vitro  assay of ocular 
irritancy.  Fundam. Appl. Toxicol.  18:442-449.  
(12) Siegel, J.D., Rhinehart, E., Jackson, M., Chiarello, L., and the Heal ­
thcare Infection Control Practices Advisory Committee (2007). 
Guideline for Isolation Precautions: Preventing Transmission of 
Infectious Agents in Healthcare Settings. На разположение  на 
адрес : 
[http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf].  
(13) Maurer, J.K., Parker, R.D. and Jester, J.V. (2002). Extent of corneal 
injury as the mechanistic basis for ocular irritation: key findings and recommendations for the development of alternative assays.  Reg. 
Tox. Pharmacol.  36:106-117.
 
(14) Doughty, M.J., Petrou, S. and Macmillan, H. (1995). Anatomy and 
morphology of the cornea of bovine eyes from a slaughterhouse.  
Can. J. Zool.  73:2159-2165.  
(15) Collee, J. and Bradley, R. (1997). BSE: A decade on - Part I. The 
Lancet 349: 636-641.  
(16) Sina, J.F., Galer, D.M., Sussman, R.S., Gautheron, P.D., Sargent, 
E.V., Leong, B., Shah, P.V., Curren, R.D., and Miller, K. (1995). 
A collaborative evaluation of seven alternatives to the Draize eye 
irritation test using pharmaceutical intermediates.  Fundam Appl 
Toxicol  26:20-31.  
(17) ICCVAM (2006). Background review document, Current Status of 
In Vitro Test Methods for Identifying Ocular Corrosives and Severe 
Irritants: Bovine Corneal Opacity and Permeability (BCOP) Test Method. На разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ ­
ocu_brd_bcop.htm]  
(18) ICCVAM (2006). Background review document, Current Status of 
In Vitro Test Methods for Identifying Ocular Corrosives and Severe Irritants: Isolated Chicken Eye (ICE) Test Method. На разп­  
оложение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ocu_brd_bcop.htm]  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 682
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Точност : Близостта  до съответствие  между  резултатите  от метода  за 
изпитване  и приетите  еталонни  стойности . Тя е мярка  за функционалните  
характеристики  на метода  за изпитване  и един  аспект  на „приложимостта “. 
Често  терминът  се използва  взаимозаменяемо  със „съгласуваност “, и 
означава  делът  на правилните  резултати  от даден  метод  за изпитване . 
Сравнително  контролно  вещество : Вещество , използвано  като норма  за 
сравнение  с изпитваното  вещество . Едно  сравнително  контролно  вещество  
следва  да притежава  следните  свойства ; (i) постоянен  и надежден  изто­  
чник (-ци); (ii) структурно  и функционално  сходство  с класа  на изпитваните  
вещества ; (iii) известни  физични /химични  характеристики ; (iv) 
потвърждаващи  данни  за известни  въздействия , и (v) известна  ефективност  
за постигане  на желаната  реакция . 
Роговица : Прозрачната  част на предната  страна  на очната  ябълка , която  
покрива  ириса  и зеницата  и пропуска  светлината  навътре . 
Непрозрачност  на роговицата : Мярка  за степента  на непрозрачност  на 
роговицата  след  експониране  на въздействието  на изпитваното  вещество . 
Повишената  непрозрачност  на роговицата  е показател  за увреждане  на 
роговицата . Непрозрачността  може  да се оценява  субективно , както  това 
става  в изпитването  Draize със заешки  очи, или обективно  с инструмент , 
наречен  „уред  за измерване  на непрозрачност .“ 
Пропускливост  на роговицата : Количествена  мярка  за увреждане  на 
епителия  на роговицата  чрез определяне  на количеството  натриев  флуорес­  
цеинов  оцветител , преминаващо  през всички  клетъчни  слоеве  на рогов­  
ицата . 
Категория  1 на EPA:  Корозивно  въздействие  (необратимо  разрушаване  на 
очната  тъкан ), или въздействие  върху  роговицата , или дразнене , траещи  
повече  от 21 дни (1). 
Категория  R41 на ЕС: Получаване  на тъканно  увреждане  на окото  или 
сериозно  физическо  влошаване  на зрението  след  прилагане  на изпитваното  
вещество  по предната  повърхност  на окото , което  не е напълно  обратимо  в 
рамките  на 21 дни след  прилагането  (2). 
Дял на неверните  отрицателни  резултати : Пропорцията  на всички  
невярно  определени  отрицателни  резултати  по даден  метод  за изпитване  
относно  вещества , предизвикващи  положителен  резултат . Това  е един  
показател  за функционалните  характеристики  на метода  за изпитване . 
Дял на неверните  положителни  резултати : Пропорцията  на всички  
невярно  определени  положителни  резултати  по даден  метод  за изпитване  
относно  вещества , предизвикващи  отрицателен  резултат . Това  е един  
показател  за функционалните  характеристики  на метода  за изпитване . 
GHS (Глобална  хармонизирана  система  за класифициране  и 
етикетиране  на химикали ): Система , предлагаща  класифициране  на 
химикали  (вещества  и смеси ) според  стандартизирани  видове  и степени  
на физическа , здравна  и екологична  опасност  и разглеждаща  съответни  
съобщителни  елементи , като например  пиктограми , сигнални  думи , 
съобщения  за опасност , съобщения  за предпазни  мерки  и информационни  
листовки  за безопасност , така че те да съобщават  информация  за тяхното  
неблагоприятно  въздействие  с оглед  защита  на хората  (включително  работ­  
одатели , работещи , служители  в транспорта , потребители  и аварийни  служ­  
ители ) и на околната  среда  (3). ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 683
 
Категория  1 по GHS:  Получаване  на тъканно  увреждане  на окото  или 
сериозно  физическо  влошаване  на зрението  след  прилагане  на изпитваното  
вещество  по предната  повърхност  на окото , което  не е напълно  обратимо  в 
рамките  на 21 дни след  прилагането  (3). 
Опасност : Вътрешно  присъщо  свойство  на даден  агент  или ситуация , 
притежаващо  потенциал  да предизвика  неблагоприятни  ефекти  когато  
един  организъм , система  или (суб)популация  бъдат  експонирани  на този 
агент . 
In Vitro  балова  оценка  за дразнещо  действие  (ИВБОДД ): Емпирично  
получена  формула , използвана  в анализа  за НПГР , при която  средните  
стойности  за непрозрачност  и пропускливост  за всяка  третирана  група  се 
комбинират  в една  in vitro  балова  оценка  за всяка  третирана  група . 
ИВБОДД  = средната  стойност  за непрозрачност  + (15 x средната  
стойност  за пропускливост ). 
Отрицателна  контрола : Нетретирано  точно  копие , съдържащо  всички  
компоненти  на дадена  тестова  система . Тази  проба  се провежда  паралелно  
с проби , третирани  с изпитваното  вещество , и с други  контролни  проби , за 
определяне  доколко  разтворителят  взаимодейства  с тестовата  система . 
Вещество  без дразнещо  действие : Веществата , които  не се класифицират  
като вещества  с дразнещо  действие  върху  очите  от Категории  I, II, или III 
на ЕРА ; Категории  R41 или R36 на ЕС; или Категории  1, 2A, или 2B на 
GHS.  
Вещество  с корозивно  действие  върху  очите : (а) Вещество , което  
причинява  необратимо  тъканно  увреждане  на окото ; (б) Вещества , които  
се класифицират  като вещества  с дразнещо  действие  върху  очите  от 
Категория  1 на GHS, Категория  I на EPA, или Категория  R41 на ЕС (1) 
(2) (3).  
Вещество  с дразнещо  действие  върху  очите : (а) Вещество , което  
причинява  обратимо  изменение  на окото  след  прилагане  върху  предната  
повърхност  на окото ; (б) Вещества , които  се класифицират  като вещества  
с дразнещо  действие  върху  очите  от Категория  II или III на EPA, Категория  
R36 на ЕС, или Категория  2A или 2B на GHS (1) (2) (3).  
Вещество  със силно  дразнещо  действие  върху  очите : (a) Вещество , което  
причинява  тъканно  увреждане  на окото  след  прилагане  върху  предната  
повърхност  на окото , което  не преминава  до 21 дни след  прилагането  или 
причинява  сериозно  физическо  влошаване  на зрението ; (б) Вещества , които  
се класифицират  като вещества  с дразнещо  действие  върху  очите  от 
Категория  1 на GHS, Категория  I на EPA, или Категория  R41 на ЕС (1) 
(2) (3).  
Уред  за измерване  на непрозрачност : Инструмент , използван  за 
измерване  на „непрозрачността  на роговицата “ чрез количествена  оценка  
на пропусканата  през роговицата  светлина . Типичният  инструмент  има 
две отделения , всяко  със свой  собствен  светлинен  източник  и фотоклетка . 
Едното  отделение  се използва  за третираната  роговица , а другото  се 
използва  за калибриране  и нулиране  на инструмента . Светлината  от 
халогенна  лампа  се изпраща  през едно  контролно  отделение  (празно  
отделение  без прозорци  или течност ) към фотоклетка  и се сравнява  със 
светлината , изпращана  към друга  фотоклетка  през експерименталното  
отделение , в което  се намира  отделението  с роговицата . Разликата  в проп­  
усканата  през фотоклетките  светлина  се сравнява  и на цифровия  екран  се 
изписва  цифрова  стойност  за непрозрачността . 
Положителна  контрола : Точно  копие , съдържащо  всички  компоненти  на 
дадена  тестова  система  и третирано  с вещество , за което  е известно , че 
индуцира  положителна  реакция . За да се осигури  да може  да се направи  
оценка  на измененията  във времето  на реакцията  на положителната  
контрола , силата  на острата  реакция  не следва  да е прекомерно  голяма . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 684
 
Надеждност : Мярка  за степента , в която  даден  метод  за изпитване  може  да 
бъде  провеждан  възпроизводимо  във времето  в рамките  на и между  
различни  лаборатории , когато  за провеждането  му се използва  един  и същ 
протокол . Оценката  за нея се прави  като се изчислява  между - и вътрешно­  
лабораторната  възпроизводимост  и междулабораторната  повторяемост . 
Контрола  „разтворител /носител “: Нетретирана  проба , съдържаща  всички  
компоненти  на дадена  тестова  система , включително  разтворителя  или 
носителя , която  е третирана  с проби , обработени  с изпитваното  вещество , 
и с други  контролни  проби , за определяне  на базовата  реакция  на 
обработените  проби  с изпитваното  вещество , разтворено  в същия  разт­  
ворител  или носител . Когато  се изпитва  с паралелна  отрицателна  
контрола , тази проба  показва  също  доколко  разтворителят  или носителят  
взаимодействат  с тестовата  система . 
Поетапно  изпитване : Стратегия  за стъпаловидно  изпитване , при която  
цялата  съществуваща  информация  за дадено  изпитвано  вещество  се 
разглежда  по конкретен  ред, като на всеки  етап се оценява  значимостта  
на данните  — за определяне  доколко  съществува  достатъчно  информация , 
за да се вземе  решение  за класифициране  на веществото  като опасно , преди  
да се премине  към следващия  етап. Ако дадено  изпитвано  вещество  може  да 
се определи  като вещество  с потенциално  дразнещо  действие  въз основа  на 
съществуващата  информация , не се налага  допълнително  изпитване . Ако 
дадено  изпитвано  вещество  не може  да се определи  като вещество  с поте­  
нциално  дразнещо  действие  въз основа  на съществуващата  информация  се 
провежда  процедура  за поетапно  последователно  изпитване  върху  животни , 
докато  стане  възможно  да се направи  недвусмислена  класификация . 
Валидиран  метод  за изпитване : Метод  за изпитване , за който  са 
извършени  валидиращи  изследвания  за определяне  на приложимостта  
(включително  на точността ) и надеждността  му за конкретна  цел. Важно  
е да се отбележи , че един  валидиран  метод  за изпитване  може  да не 
притежава  достатъчно  функционални  характеристики  по отношение  на 
точността  и надеждността  си, за да се счита  за приложим  за предлаганата  
цел. 
Оценяване  на значимостта  на данните : Процесът  на отчитане  на силните  
и слаби  страни  на различни  видове  информация  за достигане  до и в 
подкрепа  на дадено  заключение  относно  потенциалната  опасност  на едно  
вещество . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 685
 
Допълнение  2 
Опитни  вещества  за метода  за изпитване  НПГР  
Преди  редовно  използване  на метод  за изпитване , който  се придържа  към 
настоящия , лабораториите  могат  да докажат  техническа  компетентност  като 
правилно  определят  класификацията  за корозивно  действие  върху  очите  за 
10-те вещества , препоръчани  в Таблица  1. Тези  вещества  са подбрани  като 
представителни  за редица  реакции  на локално  дразнещо /корозивно  действие  
върху  окото , въз основа  на резултати  от in vivo  изпитване  със заешки  очи 
(TG 405) ( т.е. Категории  1, 2A, 2B, или Некласифицирано  и неетикетирано  
съгласно  глобалната  система  на ОН GHS (3) (7). От друга  страна , предвид  
валидираното  предназначение  на тези анализи  (т.е. за определяне  само  на 
вещества  с корозивно / силно  дразнещо  действие  върху  очите ), съществуват  
само  два възможни  тестови  резултата  за целите  на класифицирането , с 
които  да се докаже  компетентност  (вещества  с корозивно /силно  дразнещо  
действие  или вещества  без корозивно /силно  дразнещо  действие ). Други  
критерии , които  бяха  използвани  за подбор  на посочените  вещества  са: 
наличието  на веществата  на пазара , съществуването  на висококачествени  
in vivo  еталонни  данни  и съществуването  на висококачествени  данни  от 
двата  метода  in vitro , за които  се разработва  Ръководство  за изпитване . 
Поради  тази причина , веществата  с дразнещо  действие  са подбрани  от 
препоръчителния  списък  на ICCVAM с 122 еталонни  вещества  за 
валидиране  на in vitro  методи  за изпитване  на токсичност  върху  очите  
(вж. Допълнение  H: Препоръчителни  еталонни  вещества  на ICCVAM) (5). 
Еталонните  данни  са дадени  в документацията  на ICCVAM за метода  за 
изпитване  НПГР  и метода  с изолирани  птичи  очи (ИПО ) (17) (18).  
Таблица  1 
Препоръчвани  вещества  за доказване  на техническа  опитност  по отношение  на НПГР  
Вещество  CASRN Химичен  клас ( 1 ) Физична  
форма  In Vivo  Класиф­  
икация  ( 2 ) In Vitro  Класификация  ( 3 ) 
Бензалкониев  
хлорид  (5 %) 8001-54-5 Ониево  
съединение  Течност  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Хлорхексидин  55-56-1 Амин , Амидин  Твърдо  
вещество  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Дибензоил -L- 
винена  киселина  2743-38-6 Карбоксилна  
киселина , естер  Твърдо  
вещество  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Имидазол  288-32-4 Хетероциклен  Твърдо  
вещество  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Трихлороац­  
етилова  киселина  
(30 %) 76-03-9 Карбонова  
киселина  Течност  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
2,6- 
Дихлоробензоил  
хлорид  4659-45-4 Киселинен  
халид  Течност  Категория  2A Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Етил -2-метил  
ацетоацетат  609-14-3 Кетон , естер  Течност  Категория  2B Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Амониев  нитрат  6484-52-2 Неорганична  
сол Твърдо  
вещество  Категория  2A Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 686
 
Вещество  CASRN Химичен  клас ( 1 ) Физична  
форма  In Vivo  Класиф­  
икация  ( 2 ) In Vitro  Класификация  ( 3 ) 
Глицерин  56-81-5 Алкохол  Течност  Неетик­  
етирано  Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
n-Хексан  110-54-3 Въглеводород  
(ацикличен ) Течност  Неетик­  
етирано  Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Съкращения : CASRN = Номер  по регистъра  на справочната  служба  по химикали  
( 1 ) За всяко  изпитвано  вещество  е определен  химичен  клас, като за целта  се използва  стандартна  схема  за класификация , 
базираща  се на системата  за класификация  MeSH (National Library of Medicine Medical Subject Headings) ( на разположение  
на адрес : http//www.nlm.nih.gov/mesh). 
( 2 ) Базира  се на резултати  от in vivo  изпитване  със заешки  очи (ОИСР  TG 405) и се използва  глобалната  система  GHS на ОН (3)(7). 
( 3 ) Базира  се на резултати  от изпитване  за НПГР  и ИПО . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 687
 
Допълнение  3 
ДЪРЖАТЕЛ  ЗА РОГОВИЦА  ЗА НПГР  
1. Държателите  за роговицата  за НПГР  са изработени  от инертен  
материал  (напр . полипропилен ). Държателите  се състоят  от две части  
(предно  и задно  отделение ) и имат  две сходни  цилиндрични  вътрешни  
отделения . Всяко  отделение  е с вместимост  5 mL и завършва  със 
стъклен  прозорец , през който  се отчитат  стойностите  за непрозрач­  
ността . Всяко  от вътрешните  отделения  е с диаметър  1,7 cm и 
дълбочина  2,2 cm (  1 ). За да се избегнат  течове  се използва  О-пръстен , 
разположен  върху  задното  отделение . Роговиците  се поставят  с ендот­  
елиалната  страна  надолу  върху  О-пръстена  на задните  отделения , а 
предните  отделения  се поставят  върху  епителиалната  страна  на рогов­  
иците . Отделенията  се закрепват  с три неръждаеми  винта , разположени  
по външните  краища  на отделението . В края  на всяко  отделение  се 
намира  стъклен  прозорец , който  може  да се сваля  за улесняване  
достъпа  до роговицата . Между  стъкления  прозорец  и отделението  
също  е поставен  О-пръстен  за защита  от течове . Два отвора  върху  
горната  страна  на всяко  отделение  позволяват  поставяне  и изваждане  
на средата  и на изпитваните  съединения . По време  на третирането  и 
инкубацията  те се затварят  с гумени  капачки .
 
Превод  на надписите  на фигурата : 
Glass disc: Стъклен  диск  
PTFE-O-ring: политетрафлуороетиленов  О-пръстен  
Refill: отвор  за пълнене  
Hanger: кука  
Cap: капачка  
Nut: гайка  
O-ring: О-пръстен  
Posterior compartment: задно  отделение  
Anterior compartment: предно  отделение  
Fixing screws: застопоряващи  винтове  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 688  
( 1 ) Дадените  размери  са за държател  на роговица , използван  за крави  на възраст  между  
12 и 60 месеца . В случай  че се използват  животни  на възраст  от 6 до 12 месеца , 
държателят  ще трябва  да се конструира  така, че всяко  отделение  да е с вместимост  
4 mL, а всяко  от вътрешните  отделения  да е с диаметър  1,5 cm и дълбочина  2,2 cm. 
При всяка  нова  конструкция  за държател  за роговица  е важно  съотношението  
между  експонираната  повърхностна  площ  на роговицата  и обема  на задното  
отделение  да се запази  както  при традиционния  държател . Това  е необходимо , за 
да се осигури  стойностите  за пропускливост  да бъдат  правилно  определени  за 
изчисляването  на ИВБОДД  по предлаганата  формула .
 УРЕДЪТ  ЗА ИЗМЕРВАНЕ  НА НЕПРОЗРАЧНОСТ  
2. Уредът  за измерване  на непрозрачност  е инструмент  за измерване  на 
пропусканата  светлина . Светлината  от халогенна  лампа  се изпраща  
през едно  контролно  отделение  (празно  отделение  без прозорци  или 
течност ) към фотоклетка  и се сравнява  със светлината , изпращана  
към друга  фотоклетка  през експерименталното  отделение , в което  се 
намира  отделението  с роговицата . Разликата  в пропусканата  през 
фотоклетките  светлина  се сравнява  и на цифровия  екран  се изписва  
цифрова  стойност  за непрозрачността . Определят  се единиците  за 
непрозрачност . 
3. Уредът  за измерване  на непрозрачност  следва  да реагира  линейно , като 
отчита  диапазон  от стойности  за непрозрачността , който  обхваща  
референтните  стойности , използвани  за различните  класификации , 
описани  в Прогнозния  модел  (т.е. до референтната  стойност , която  
определя  корозивното /силно  дразнещото  действие ). За да се гарантират  
линейно  и точно  отчетени  стойности  до 75-80 единици  непрозрачност  е 
необходимо  уредът  да се калибрира  като се използва  серия  от калибри . 
Калибрите  (непрозрачни  полиестерни  листове ) се поставят  в 
калибриращото  отделение  (отделение  за роговицата , предназначено  за 
поставяне  на калибрите ) и се отчитат  с уреда  за измерване  на 
непрозрачност . Калибриращата  камера  е предвидена  да помества  
калибрите  на приблизително  същото  разстояние  между  източника  на 
светлината  и фотоклетката , на което  се разполагат  роговиците  по 
време  на измерването  за непрозрачност . Уредът  за измерване  на 
непрозрачност  най-напред  се калибрира  за 0 единици  непрозрачност  
като се използва  калибриращото  отделение  без калибър . След  това в 
калибриращото  отделение  последователно  се поставят  три различни  
калибри  и се измерва  непрозрачността  им. Калибри  1, 2 и 3 следва  
да дават  стойности  за непрозрачността  равни  на зададените  им 
съответно  75, 150, и 225 единици  ± 5 %.  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 689
 
Б. 48  МЕТОД  ЗА ИЗПИТВАНЕ  С ИЗОЛИРАНИ  ПТИЧИ  ОЧИ  ЗА 
ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ВЕЩЕСТВА  С КОРОЗИВНО  И СИЛНО  
ДРАЗНЕЩО  ДЕЙСТВИЕ  ВЪРХУ  ОЧИТЕ  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Методът  за изпитване  с изолирани  птичи  очи (ИПО ) е in vitro  метод  
за изпитване , който  може  да се използва  при определени  обстоят­  
елства  и със специфични  ограничения  за класифициране  на 
вещества  и смеси  с корозивно  и силно  дразнещо  действие  върху  
очите , (1) (2) (3). За целите  на този метод  за изпитване , като 
вещества  със силно  дразнещо  действие  се дефинират  такива , които  
предизвикват  лезии  върху  очите  на заек, продължаващи  най-малко  21 
дни след  прилагането . Въпреки  че не се смята  за валиден  като пълен  
заместител  на in vivo  тестът  върху  заешки  очи, методът  с ИПО  се 
препоръчва  да се използва  като част от една  поетапна  стратегия  за 
изпитване  за регулаторно  класифициране  и етикетиране  в обхвата  на 
конкретна  област  на приложимост  (4) (5). Изпитваните  веществата  и 
смеси  (6), които  реагират  положително  на този анализ , могат  да се 
класифицират  като вещества  с корозивно  или силно  дразнещо  
действие  върху  очите  без по-нататъшно  изпитване  при зайци . 
Вещества , които  покажат  отрицателен  резултат , е необходимо  да се 
изпитват  при зайци  като се прилага  стратегия  за последователно  
изпитване , както  това е разгледано  в Ръководството  за изпитания  на 
ОИСР  405 (7) ( глава  Б.5 в настоящото  приложение ). 
2. Целта  на този метод  за изпитване  е да се опишат  процедурите , 
използвани  за оценка  на потенциалното  корозивно  или силно  
дразнещо  действие  върху  очите  на изпитваното  вещество , измерени  
чрез способността  му да индуцира  токсичност  върху  извадени  птичи  
очи. Токсичният  ефект  върху  роговицата  се измерва  чрез: (i) 
качествена  оценка  на непрозрачността , (ii) качествена  оценка  на 
увреждането  на епителия  при прилагане  върху  окото  на флуорес­  
центен  оцветител  (задържане  на флуоресцентен  оцветител ), 
(iii) количествено  измерване  на увеличената  дебелина  (подуване ), и 
(iv) качествена  оценка  на макроскопичните  морфологични  
увреждания  по повърхността . Оценките  за непрозрачност , подуване  
и увреждане  на роговицата  след  експониране  на изпитваното  
вещество  се определят  поотделно , след  което  се комбинират , за да 
се направи  Класификация  за дразнещо  действие  върху  очите . 
3. Вещества  с дразнещо  действие  върху  очите , предизвикващи  лезии , 
които  преминават  за по-малко  от 21 дни на вещества  без дразнещо  
действие  са изпитвани  също  и по метода  на изпитване  с ИПО . 
Въпреки  това, не е направена  официална  оценка  за точността  и 
надеждността  на метода  за изпитване  с ИПО  за тези категории  
вещества . 
4. Определенията  са дадени  в Допълнение  1. 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
5. Този  метод  за изпитване  се базира  на Протокола  за метода  за 
изпитване  с ИПО  (8) на Междуведомствения  координационен  
комитет  за валидиране  на алтернативни  методи  (ICCVAM), който  бе 
изготвен  след едно  международно  изследване  за валидиране  (4) (5) (9), 
за което  принос  имаха  Европейският  център  за валидиране  на 
алтернативни  методи , Японският  център  за валидиране  на 
алтернативни  методи  и TNO Катедра  „Качество  на живот “ към Токс­  
икология  и приложна  фармакология  (Холандия ). Протоколът  се базира  
на информация , получена  от публикувани  протоколи , както  и на 
текущия  протокол , използван  от TNO (10) (11) (12) (13) (14).  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 690
 
6. Установените  ограничения  на този метод  за изпитване  се базират  на 
равнищата  на неверните  положителни  резултати  за алкохоли  и 
равнищата  на неверните  отрицателни  резултати  за твърди  и 
повърхностно  активни  вещества  (вж. точка  47) (4). Когато  веществата  
от този химичен  и физичен  клас бъдат  изключени  от базата  данни , 
точността  на ИПО  навсякъде  в системите  за класификация  на ЕС, EPA 
и Глобалната  система  за хармонизиране  на класификацията  на химични  
вещества  и смеси  GHS значително  се подобрява  (4). Според  целта  на този 
анализ  (т.е. да се определят  само  веществата  с корозивно /силно  дразнещо  
действие  върху  очите ) неверните  отрицателни  резултати  не са от 
критично  значение , тъй като такива  вещества  се тестват  впоследствие  
при зайци  или чрез други  съответно  валидирани  in vitro  изпитания  в 
зависимост  от регулаторните  изисквания , като се прилага  стратегия  за 
последователно  изпитване  с подход , отчитащ  значимостта  на различните  
видове  данни . Освен  това текущата  база данни  за валидирането  не позво­  
ляваше  да бъде  направена  адекватна  оценка  на някои  класове  химикали  
или продукти  (напр . смеси ). Въпреки  това изследователите  биха  могли  да 
използват  този метод  за изпитване  на всякакви  видове  материал  (включ­  
ително  за смеси ), като положителният  резултат  може  да се приеме  за 
показател  за корозивно  или силно  дразнещо  действие  върху  очите . Все 
пак положителни  резултати , получени  от алкохоли  следва  да се тълкуват  
предпазливо , поради  риска  от свръхпрогнозиране  на опасност . 
7. Всички  процедури  с птичи  очи следва  да съответстват  на приложимите  
за изпитателната  лаборатория  разпоредби  и процедури  за работа  с 
материали  с хуманен  или животински  произход , които  включват , но 
не се ограничават  само  с тъкани  и тъканна  течност . Препоръчва  се 
спазването  на универсалните  лабораторни  предпазни  мерки  (15).  
8. Едно  ограничение  на метода  за изпитване  е фактът , че въпреки  че той 
отчита  някои  от действията  върху  очите , изследвани  с метода  за 
изследване  на дразнещо  действие  върху  заешки  очи, и до известна  
степен  отчита  и силата  на това действие , той не взема  под внимание  
уврежданията  на конюнктивата  и ириса . Също  така, въпреки  че с 
метода  за изпитване  с ИПО  не може  да се направи  оценка  per se  на 
обратимостта  на лезиите  върху  роговицата , бе предложено  въз основа  
на изследванията  върху  заешки  очи оценката  за първоначалната  
дълбочина  на увреждането  на роговицата  да се използва  за 
разграничаването  на необратимото  от обратимото  действие  (16). В 
заключение , методът  за изпитване  с ИПО  не позволява  да се 
направи  оценка  на потенциала  за системно  токсично  действие , 
свързано  с експонирането  на очите . 
9. Продължават  усилията  да се охарактеризират  допълнително  ползата  и 
ограниченията  на методът  за изпитване  с ИПО  за определянето  на 
вещества  със слабо  или без дразнещо  действие  (вж. също  точка  48). 
Приканват  се потребителите  да предоставят  на валидиращите  орга­  
низации  проби  и/или данни  за официално  оценяване  на възможните  
бъдещи  приложения  на метода  за изпитване  с ИПО , включително  и за 
определяне  на вещества  със слабо  или без дразнещо  действие  върху  
очите . 
10. Всяка  лаборатория , която  за първи  път започва  да извършва  такива  
анализи , следва  да използва  опитните  химикали , посочени  в 
Допълнение  2. Лабораториите  могат  да използват  тези химикали  за 
доказване  на своята  техническа  компетентност  за прилагане  на метода  
за изпитване  с ИПО  преди  предаване  на данните  от анализа  на ИПО  за 
целите  на регулаторното  класифициране  според  степента  на опасност . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
11. Методът  за изпитване  с ИПО  е органотипен  модел , който  осигурява  
краткотрайно  поддържане  на птичето  око in vitro . При този метод  за 
изпитване  увреждането , причинено  от изпитваното  вещество , се 
оценява  посредством  определяне  на подуването , непрозрачността  и 
задържането  на флуоресцеин  от роговицата . Докато  последните  два 
параметъра  се оценяват  качествено , анализът  на подуването  на 
роговицата  се извършва  количествено . Всяко  измерване  се преобразува  
в количествен  резултат , който  се използва  за изчисляване  на един  общ 
Коефициент  на дразнимост , или му се дава качествена  категоризация , 
използвана  за in vitro  класификация  на корозивно  и силно  дразнещо  
действие  върху  очите . След  това всеки  от тези резултати  може  да се 
използва  за предвиждане  на in vivo  потенциала  за корозивно  и силно  
дразнещо  действие  върху  очите  на изпитваното  вещество  (вж. 
критериите  за решението ). ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 691
 
Източник  и възраст  на птичите  очи 
12. Традиционно  за този анализ  се използват  очи от птици , събрани  в 
кланица  където  птиците  се убиват  за консумация  от човека , като така 
отпада  необходимостта  от лабораторни  животни . Използват  се само  
очи на здрави  животни , смятани  за подходящи  за включване  в 
хранителната  верига  на човека . 
13. Въпреки  че не е провеждано  контролирано  изследване  за оценка  на 
оптималната  възраст , възрастта  и теглото  на птиците , които  
традиционно  се използват  в този метод  за изпитване , са тези на 
пилетата , които  традиционно  се обработват  в птицекланици  (т.е. на 
възраст  приблизително  7 седмици , 1,5 – 2,5 kg).  
Събиране  и транспортиране  на очите  до лабораторията  
14. Главите  следва  да се отстраняват  незабавно  след  седиране  на птиците , 
което  обикновено  става  чрез електрически  шок, и след  срязване  на 
шията  за изтичане  на кръвта . Източникът  на птичи  материал  следва  да 
е разположен  в близост  до лабораторията , за да може  главите  да се 
прехвърлят  от кланицата  в лабораторията  достатъчно  бързо , за да се 
сведе  до минимум  влошаването  и/или бактериалното  замърсяване . 
Интервалът  от време  между  събирането  на птичите  глави  и 
използването  на очите  за метода  за изпитване  с ИПО  следва  да 
бъде  сведен  до минимум  (обикновено  до два часа) и следва  
убедително  да се покаже , че не компрометира  резултатите  от 
анализа . Тези  резултати  се базират  на критериите  за подбор  на 
очите , както  и на реакцията  на положителната  и отрицателната  
контрола . Всички  очи, използвани  за анализа , следва  да бъдат  от 
една  и съща  група  очи, събрани  през даден  ден. 
15. Тъй като дисекцията  на очите  се извършва  в лабораторията , целите  
глави  се транспортират  от кланицата  при стайна  температура  в 
пластмасови  кашони , овлажнени  с кърпи , натопени  в изотоничен  
солен  разтвор . 
Критерии  за избор  на очи, използвани  за метода  ИПО  
16. Очите  с високо  базово  флуоресцеиново  оцветяване  (напр . > 0,5) или с 
висока  базова  непрозрачност  на роговицата  (напр . > 0.5) след  
изваждане  се изхвърлят . 
17. Всяка  третирана  група  и паралелна  положителна  контрола  се състои  
от минимум  три очи. Отрицателната  контролна  група  или контролата  
„разтворител “ (ако се използва  разтворител , различен  от солен  
разтвор ) се състои  от минимум  едно  око. 
ПРОЦЕДУРА  
Подготовка  на очите  
18. Клепачите  внимателно  се изрязват , като се внимава  да не се нарани  
роговицата . Целостта  на роговицата  бързо  се проверява  с капка  2 % 
(w/v) натриев  флуоресцеин , приложен  върху  повърхността  на 
роговицата  в продължение  на няколко  секунди  и след  това се 
изплаква  с изотоничен  солен  разтвор . След  това обработените  с 
флуоресцеин  очи се изследват  с микроскоп  с шпалт -лампа , за да се 
провери  дали  роговицата  не е увредена  (т.е. задържането  на 
флуоресцеин  и непрозрачността  на роговицата  трябва  да са ≤ 0,5).  
19. Ако не е увредено , окото  се изрязва  от черепа , като се внимава  да не 
се нарани  роговицата . Очната  ябълка  се изважда  от орбитата , като 
мигателната  ципа  се държи  здраво  с хирургически  форцепс , а очните  
мускули  се срязват  с извита  ножица  с тъп връх . Важно  е да се избегне  
нараняването  на роговицата  от прекомерен  натиск  (т.е. артефакти , 
деформирани  от натиск ). 
20. Когато  окото  се извади  от орбитата  към него  трябва  да остане  
закрепена  една  видима  част от очния  нерв . След  като вече бъде  
извадено  от орбитата  окото  се поставя  върху  абсорбираща  
подложка  и се изрязват  мигателната  ципа  и останалата  свързваща  
тъкан . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 692
 
21. Изваденото  око се поставя  в скоба  от неръждаема  стомана , като 
роговицата  се разполага  вертикално . След  това скобата  се пренася  в 
камерата  на обливащ  апарат  (superfusion apparatus) (16). Лампите  
следва  да бъдат  разположени  в обливащия  апарат  така че цялата  
роговица  да може  да се облее  с изотоничния  солен  разтвор . 
Камерите  на обливащия  апарат  трябва  да бъдат  с контролирана  
температура  от 32 ± 1,5 °C. В Допълнение  3 е дадена  схема  на 
един  типичен  обливащ  апарат  и на скобите  за очи, които  могат  да 
бъдат  закупени  или изработени . Апаратът  може  да се модифицира  
според  нуждите  на всяка  лаборатория  (напр . за побиране  на 
различен  брой  очи). 
22. След  поставяне  в обливащия  апарат  очите  отново  се оглеждат  с 
микроскоп  с шпалт -лампа , за да се провери  дали  не са наранени  по 
време  на дисекцията . На този етап се измерва  и дебелината  в най- 
високата  точка  на роговицата  като се използва  дълбокомерът  на 
микроскопа  с шпалт -лампа . Очите  с: (i), задържане  на флуоресцеин  
> 0.5; (ii) непрозрачност  на роговицата  > 0,5; или, (iii), други  
признаци  на увреждане , се подменят . От очите , които  не отпаднат  
на базата  на някой  от тези критерии , отпадат  очите  с дебелина  на 
роговицата , отклоняваща  се с повече  от 10 % от средната  стойност  за 
всички  очи. Потребителите  следва  да имат  предвид , че микроскопите  
с шпалт -лампа  може  да отчитат  различни  стойности  за дебелината  на 
роговицата  при различни  настройки  за шпалт -широчината . Шпалт - 
широчината  следва  да се настрои  на 0,095 mm.  
23. След  като всички  очи бъдат  подложени  на оглед  и одобрени , те се 
инкубират  в продължение  на приблизително  45 до 60 минути  за 
уравновесяване  спрямо  тестовата  система  преди  дозиране . След  
периода  на уравновесяване  се извършва  нулево  еталонно  замерване  
на дебелината  и непрозрачността  на роговицата , което  да служи  за 
база при отчитането  (напр . време  = 0). За базово  измерване  при 
отчитането  на резултатите  за поглъщането  на флуоресцеин  служи  
отчетената  стойност  по този показател  по време  на дисекцията . 
Прилагане  на изпитваното  вещество  
24. Непосредствено  след  нулевите  еталонни  замервания  окото  (в 
държателя  му) се изважда  от обливащия  апарат  като се поставя  в 
хоризонтално  положение  и върху  роговицата  се прилага  изпитваното  
вещество . 
25. Течните  изпитвани  вещества  обикновено  се изпитват  неразредени , но 
може  да се разреждат  ако това е необходимо  (напр . като част от 
замисъла  на изследването ). Предпочитан  разтворител  за разреждане  
е физиологичният  солен  разтвор . Въпреки  това, при контролирани  
условия  могат  да се използват  и други  разтворители , но трябва  да 
се докаже  уместността  на разтворители , различни  от физиологичния  
солен  разтвор . 
26. Течните  изпитвани  вещества  се прилагат  върху  роговицата , така че 
цялата  повърхност  на роговицата  да се покрие  напълно  с изпитваното  
вещество ; стандартният  обем  е 0,03 mL.  
27. Ако е възможно , твърдите  вещества  следва  да бъдат  натрошени  
възможно  най-фино  в хаван  с чукало  или подобно  средство  за 
натрошаване . Прахообразното  вещество  се прилага  върху  роговицата  
така че повърхността  да се покрие  равномерно  с изпитваното  
вещество ; стандартното  количество  е 0,03 g.  
28. Изпитваното  вещество  (течно  или твърдо ) се прилага  в продължение  
на 10 секунди  и след  това се отмива  от окото  с изотоничен  солен  
разтвор  (приблизително  20 mL) при стайна  температура . След  това 
окото  (в държателя  му) се връща  в обливащия  апарат  в първонач­  
алното  му изправено  положение . 
Контроли  
29. Във всеки  експеримент  се включват  паралелни  отрицателни  или 
контроли  „разтворител /носител “ и положителни  контроли . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 693
 
30. Когато  се изпитват  течности  със 100 % концентрация  или твърди  
вещества , за паралелна  отрицателна  контрола  в метода  за изпитване  
с ИПО  се използва  физиологичен  солен  разтвор  за откриване  на несп­  
ецифични  промени  в тестовата  система  и за да се осигури , че 
опитните  условия  няма  да доведат  до неподходяща  дразнителна  
реакция . 
31. Когато  се изпитват  разредени  течности , в метода  за изпитване  се 
включва  паралелна  контролна  група  „разтворител /носител “ за 
откриване  на неспецифични  промени  в тестовата  система  и за да се 
осигури , че опитните  условия  няма  да доведат  до неподходяща  
дразнителна  реакция . Както  е посочено  в точка  25, може  да се 
използва  само  разтворител /носител , за който  е доказано , че не влияе  
неблагоприятно  върху  тестовата  система . 
32. Във всеки  експеримент  се включва  известно  вещество  с дразнещо  
действие  върху  очите  като паралелна  положителна  контрола  за 
удостоверяване  индуцирането  на съответната  реакция . Тъй като при 
този метод  за изпитване  анализът  на ИПО  се използва  за определяне  
на вещества  с корозивно  или силно  дразнещо  действие , положит­  
елната  контрола  следва  да е еталонно  вещество , което  при този 
метод  за изпитване  индуцира  остра  реакция . Все пак, за да се 
осигури  да може  да се направи  оценка  на измененията  във времето  
на реакцията  на положителната  контрола , силата  на острата  реакция  
не следва  да е прекомерно  голяма . За положителната  контрола  следва  
да се генерират  достатъчни  in vitro  данни , за да може  да се изчисли  
статистически  дефиниран  приемлив  диапазон  за положителната  
контрола . Ако за конкретна  положителна  контрола  няма  на разп­  
оложение  достатъчно  данни  от предишни  изпитания  с метода  за 
изпитване  с ИПО , може  да е необходимо  да се проведат  изследвания  
за набавяне  на такава  информация . 
33. Примери  за положителна  контрола  за течни  изпитвани  вещества  са 
10 % оцетна  киселина  или 5 % бензалкониев  хлорид , докато  примери  
за положителна  контрола  за твърди  изпитвани  вещества  са натриев  
хидроокис  или имидазол . 
34. Контролните  сравнителни  вещества  са от полза  за оценката  на поте­  
нциала  за дразнещо  действие  върху  очите  на неизвестни  химикали  от 
конкретен  химичен  или продуктов  клас, или за оценка  на съответния  
потенциал  за дразнещо  действие  на вещества  с дразнещо  действие  
върху  очите  в рамките  на конкретен  диапазон  от реакции  на дразнене . 
Измерени  крайни  резултати  
35. Обработените  роговици  се оценяват  преди  третирането  и 30, 75, 120, 
180, и 240 (± 5) минути  след  последващото  третиране  с отмиване . 
Тези  времеви  точки  осигуряват  необходимия  брой  замервания  през 
четиричасовия  период  на третиране , като същевременно  между  
отделните  измервания  остава  достатъчно  време  да се направят  необ­  
ходимите  наблюдения  върху  всички  очи. 
36. Крайните  показатели , които  се оценяват  са непрозрачност  на рогов­  
ицата , подуване  на роговицата , задържане  на флуоресцеин  и 
морфологични  изменения  (напр . образуване  на вдлъбнатини  или 
отпускане  на епителия ). Всички  крайни  резултати , с изключение  на 
задържането  на флуоресцеин  (което  се определя  само  преди  
третирането  и 30 минути  след  експониране  на изпитваното  
вещество ) се определят  във всяка  от горните  времеви  точки . 
37. Препоръчително  е да се направят  снимки  за документиране  на 
непрозрачността  на роговицата , задържането  на флуоресцеин , на 
морфологичните  изменения  и на хистопатологията , ако се провежда  
такова  изследване  
38. След  заключителното  изследване  след  четири  часа е добре  
потребителите  да съхранят  очите  в подходящ  фиксатор  (напр . 
неутрален  буферен  формалинов  разтвор ) за евентуално  хистопат­  
ологично  изследване . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 694
 
39. Подуването  на роговицата  се определя  от измерванията  на дебелината  
на роговицата , направени  с оптичния  пахиметър  на микроскопа  с 
шпалт -лампа . То се изразява  процентно  и се изчислява  от 
измерванията  на дебелината  на роговицата  по следната  формула : 
" 
дебелина  на роговицата  във време  t Ä дебелина  на роговицата  във време  t ¼ 0 
дебелина  на роговицата  във време  t ¼ 0 # 
Ü 100  
40. Средната  процентна  стойност  за подуването  на роговицата  за всички  
изпитвани  очи се изчислява  за всички  времеви  точки , в които  се 
извършва  измерване . На базата  на най-високата  средна  стойност  за 
подуване  на роговицата , отчетена  в която  и да е времева  точка , се 
определя  обща  балова  оценка  на категоризация  за всяко  изпитвано  
вещество . 
41. Непрозрачността  на роговицата  се изчислява  като за отчитането  се 
използва  площта  от роговицата , която  е най-плътно  непрозрачна . 
Средната  стойност  за непрозрачност  на роговицата  за всички  
изпитвани  очи се изчислява  за всички  времеви  точки , в които  се 
извършва  измерване . На базата  на най-високата  средна  стойност  за 
непрозрачност  на роговицата , отчетена  в която  и да е времева  точка , 
се определя  обща  балова  оценка  на категоризация  за всяко  изпитвано  
вещество  (Таблица  1). 
Таблица  1 
Балови  оценки  за непрозрачност  на роговицата  
Балова  оценка  Наблюдение  
0 Липсва  непрозрачност  
0,5 Много  слаба  непрозрачност  
1 Разпръснати  или дифузни  области ; ясно  се виждат  детайли  от ириса  
2 Лесно  забележима  полупрозрачна  област ; детайлите  на ириса  са леко  
замъглени  
3 Силна  непрозрачност  на роговицата ; не се наблюдават  специфичните  
детайли  на ириса ; размерите  на лещата  едва се забелязват  
4 Пълна  непрозрачност  на роговицата ; ирисът  не се вижда  
42. Средната  стойност  за задържане  на флуоресцеин  за всички  изпитвани  
очи се изчислява  само  за 30-минутната  времева  точка  за отчитане , 
която  се използва  за определяне  на общата  балова  оценка  на 
категоризация  за всяко  изпитвано  вещество  (Таблица  2). 
Таблица  2 
Балови  оценки  за задържане  на флуоресцеин  
Балова  оценка  Наблюдение  
0 Липсва  задържане  на флуоресцеин  
0,5 Много  слабо  едноклетъчно  оцветяване  
1 Едноклетъчно  оцветяване , разпръснато  по цялата  третирана  площ  на 
роговицата  
2 Фокално  или сливащо  се плътно  едноклетъчно  оцветяване  
3 Сливащи  се големи  площи  задържане  на флуоресцеин  в роговицата  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 695
 
43. Морфологичните  изменения  включват  „образуване  на вдлъбнатини “ 
по епителните  клетки  на роговицата , „отпускане “ на епителия , 
„грапавост “ на повърхността  на роговицата  и „залепване “ на 
изпитваното  вещество  по роговицата . Тези  наблюдавани  изменения  
могат  да са с различна  тежест  и да възникват  едновременно . Класиф­  
ицирането  на тези наблюдения  е субективно  според  интерпретацията  
на изследователя . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Оценка  на данните  
44. Резултатите  за непрозрачност  на роговицата , подуване  и задържане  на 
флуоресцеин  следва  да бъдат  оценени  поотделно , за да се определи  
ИПО -клас за всеки  краен  резултат . След  това ИПО -класовете  за всеки  
краен  резултат  се комбинират , за да се направи  Класификация  за 
дразнещо  действие  за всяко  изпитвано  вещество . 
Критерии  за решението  
45. След  като се направи  оценка  на всеки  краен  резултат , могат  да се 
определят  ИПО -класовете  на базата  на един  предварително  зададен  
диапазон . Интерпретирането  на дебелината  на роговицата  (Таблица  3), 
непрозрачността  (Таблица  4), и задържането  на флуоресцеин  (Таблица  5) 
с помощта  на четири  ИПО -класа  се извършва  съгласно  следните  скали : 
Таблица  3 
Критерии  за ИПО  класифициране  за дебелина  на роговицата  
Средно  подуване  на роговицата  (%) (*) ИПО  клас 
0 до 5 I 
> 5 до 12 II 
> 12 до 18 (> 75 min след  третиране ) II 
> 12 до 18 (≤ 75 min след  третиране ) III 
> 18 до 26 III 
> 26 до 32 (> 75 min след  третиране ) III 
> 26 до 32 (≤ 75 min след  третиране ) IV 
> 32 IV  
(*) Баловите  оценки  за подуване  на роговицата  са приложими  само  ако дебелината  се измерва  с 
микроскоп  с шпалт -лампа  Haag-Streit BP900 с дълбокомер  № I и настройка  за шпалт -широчината  
9½, което  се равнява  на 0,095 mm. Потребителите  следва  да имат  предвид , че микроскопите  с 
шпалт -лампа  може  да отчитат  различни  стойности  за дебелината  на роговицата  при различни  
настройки  за шпалт -широчината . 
Таблица  4 
Критерии  за ИПО  класифициране  за непрозрачност  
Средна  максимална  балова  оценка  за непрозрач­  
ност  (*) ИПО  клас 
0,0-0,5 I 
0,6-1,5 II 
1,6-2,5 III 
2,6-4,0 IV  
(*) Вж. Таблица  1. ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 696
 
Таблица  5 
Критерии  за ИПО  класифициране  за средно  задържане  на флуоресцеин  
Средна  балова  оценка  за задържане  на 
флуоресцеин  след  30 минути  последващо  
третиране  (*) ИПО  клас 
0,0-0,5 I 
0,6-1,5 II 
1,6-2,5 III 
2,6-3,0 IV  
(*) Вж. Таблица  2. 
46. Общата  in vitro  класификация  за дразнещо  действие  на дадено  изпитвано  
вещество  се оценява  като се отчита  класификацията  за дразнещо  
действие , която  съответства  на комбинацията  от категории , получени  
за подуване  на роговицата , непрозрачност  на роговицата  и задържане  
на флуоресцеин  и като се прилага  схемата , представена  на Таблица  6. 
Таблица  6 
Обща  in vitro  класификация  за дразнещо  действие  
Класификация  Комбинация  от 3 крайни  резултата  
Вещество  с корозивно /силно  дразнещо  
действие  3 × IV 
2 × IV, 1 × III 2 × IV, 1 × II (*) 
2 × IV, 1 × I (*) 
Непрозрачност  на роговицата  ≥ 3 при 30 min 
(в най-малко  2 очи) 
Непрозрачност  на роговицата  = 4 във всяка  
времева  точка  (в най-малко  2 очи) 
Силно  отпускане  на епителия  (в най-малко  1 
око)
 
(*) Комбинации , за които  има по-слаба  вероятност  да се получат . 
47. Както  бе споменато  в точка  1, когато  изпитваното  вещество  не се 
определи  като вещество  с корозивно  или силно  дразнещо  действие  
върху  очите , следва  да бъдат  проведени  допълнителни  изпитвания  за 
целите  на класифицирането  и етикетирането . Методът  за изпитване  с 
ИПО  е с обща  точност  от 83 % (120/144) до 87 % (134/154), неверни  
положителни  резултати  6 % (7/122) до 8 % (9/116), и неверни  отриц­  
ателни  резултати  41 % (13/32) до 50 % (15/30) за определяне  на 
вещества  с корозивно  или силно  дразнещо  действие  върху  очите , в 
сравнение  с данните  от in vivo  метода  за изпитване  със заешки  очи, 
класифицирани  по системите  за класифициране  на EPA (1), ЕС (2), 
или GHS (3). Когато  от базата  данни  бъдат  изключени  вещества  от 
определени  химични  (напр . алкохоли  и повърхностно  активни  
вещества ) и физични  (напр . твърди  вещества ) класове , точността  на 
метода  ИПО  в системите  за класифициране  на ЕС, EPA, и GHS 
варира  от 91 % (75/82) до 92 % (69/75), неверните  положителни  
резултати  варират  от 5 % (4/73) до 6 % (4/70), а неверните  отриц­  
ателни  резултати  - от 29 % (2/7) до 33 % (3/9) (4).  
48. Дори  когато  дадено  изпитвано  вещество  не получи  класификация  
като вещество  с корозивно  или силно  дразнещо  действие  върху  
очите , данните  от анализа  за ИПО  могат  да бъдат  от полза  
съвместно  с данните  от in vivo  изпитанията  със заешки  очи или от 
съответно  валидирани  in vitro  изпитания  за по-нататъшната  оценка  на 
ползата  и ограниченията  на метода  за изследване  ИПО  за определяне  
на вещества  без силно  дразнещо  действие  и без дразнещо  действие  (в 
процес  на разработване  е Ръководство  за използването  на in vitro  
метод  за изпитване  за токсично  действие  върху  очите ). ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 697
 
Критерии  за приемане  на изпитанието  
49. Едно  изпитание  се смята  за приемливо  когато  паралелната  отриц­  
ателна  или контрола  „разтворител /носител “ и паралелната  полож­  
ителна  контрола  дават  класификация  за дразнещо  действие , която  
попада  съответно  в границите  на класовете  вещества  без силно  
дразнещо  действие  и вещества  със силно  дразнещо /корозивно  
действие . 
Доклад  от теста  
50. Докладът  за теста  следва  да включва  следната  информация  когато  тя 
се отнася  за провеждането  на изпитанието : 
Изпитвани  и контролни  вещества  
Наименование (-я) на химикала , като например  структурното  наиме­  
нование , използвано  от Службата  CAS, следвано  от други  наиме­  
нования , ако са известни ; 
Регистрационен  номер  CAS (RN), ако е известен ; 
Чистота  и състав  на веществото  или сместа  (в тегловни  проценти ), 
доколкото  се разполага  с такава  информация ; 
Физикохимични  свойства , като например  физично  състояние , 
летливост , киселинност , устойчивост , химичен  клас, водоразт­  
воримост , отнасяща  се до проведеното  изследване ; 
Обработка  на изпитваните /контролни  вещества  преди  изпитанието , 
ако се прилага  (напр . затопляне , смилане ); 
Устойчивост , ако е известна . 
Информация  за финансиращия  и за изпитателната  лаборатория  
Име и адрес  на финансиращия , на изпитателната  лаборатория  и на 
ръководителя  на изследването ; 
Идентификация  на източника  на очите  (напр . кланицата , от която  са 
събрани ); 
Условия  на съхранение  и транспорт  на очите  (напр . дата и час на 
събиране , период  от време  преди  започване  на изпитанието ); 
Ако са налични , специфичните  характеристики  на животните , от 
които  са събирани  очите  (напр . възраст , пол, тегло  на животното  - 
донор ). 
Аргументация  на използваните  методи  за изпитване  и протокол  
Цялостност  на метода  за изпитване  
Процедурата , използвана  за осигуряване  на цялостност  (напр . точност  
и надеждност ) на метода  за изпитване  във времето  (напр . периодично  
изпитване  на опитни  вещества , използване  на отрицателни  и полож­  
ителни  контролни  данни  от предишни  изпитания ). 
Критерии  за приемане  на изпитанието  
Ако са приложими , приемливи  съответни  сравнителни  контролни  
диапазони , основани  на данни  от предишни  изпитания . 
Тестови  условия  
Описание  на използваната  тестова  система ; 
Модел  на използвания  микроскоп  с шпалт -лампа  (напр . модел ); 
Инструментални  настройки  на използвания  микроскоп  с шпалт -лампа  
Информация  за използваните  птичи  очи, включително  декларация  за 
качеството  им; ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 698
 
Подробни  данни  за използваната  процедура  за изпитване ; 
Използвани  концентрации  на изпитваното  вещество ; 
Описание  на евентуални  модификации  на процедурата  за изпитване ; 
Позоваване  на данни  от предишни  изпитания  на модела  (напр . отриц­  
ателни  и положителни  контроли , опитни  вещества , сравнителни  
контролни  вещества ); 
Описание  на използваните  критерии  за оценка . 
Резултати  
Описание  на други  наблюдавани  ефекти ; 
Ако са приложими , снимки  на окото . 
Коментар  на резултатите . 
Заключение . 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) U.S. EPA (1996). Label Review Manual: 2nd Edition. EPA737-B-96- 
001. Washington, DC: U.S. Environmental Protection Agency.  
(2) Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  парламент  и на 
Съвета  от 16 декември  2008 г. относно  класифицирането , 
етикетирането  и опаковането  на вещества  и смеси , за 
изменение  и за отмяна  на директиви  67/548/ЕИО  и 1999/45/EC 
и за изменение  на Регламент  (ЕО) № 1907/2006. ОВ L 353, 
31.12.2008 г., стр. 1. 
(3) United nations (UN) (2007). Globally Harmonized System of Classi ­
fication and Labelling of Chemicals (GHS), Second revised edition, 
UN New York and Geneva, 2007. На разположение  на адрес : 
[http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_rev02/02files_e.html]  
(4) ICCVAM (2007). Test Method Evaluation Report -  In Vitro Ocular 
Toxicity  Test Methods for Identifying Ocular Severe Irritants and 
Corrosives. Interagency Coordinating Committee on the Validation 
of Alternative Methods (ICCVAM) and the National Toxicology Program (NTP) Interagency Center for the Evaluation of Alternative Toxicological Methods (NICEATM). NIH Publication No.: 07-4517. 
На разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ocu_tmer.htm]  
(5) ESAC (2007). Statement on the conclusion of the ICCVAM retros ­
pective study on organotypic  in vitro  assays as screening tests to 
identify potential ocular corrosives and severe eye irritants. На разп­  
оложение  на адрес : 
[http://ecvam.jrc.it/index.htm].  
(6) Регламент  (ЕО) № 1907/2006 на Европейския  парламент  и на Съвета  
от 18 декември  2006 г. относно  регистрацията , оценката , 
разрешаването  и ограничаването  на химикали  (REACH), за 
създаване  на 
Европейска  агенция  по химикали , за изменение  на Директива  
1999/45/ЕО и за отмяна  на Регламент  (ЕИО ) № 793/93 на Съвета  и 
Регламент  (ЕО) № 1488/94 на Комисията , както  и на Директива  
76/769/ЕИО  на Съвета  и директиви  91/155/ ЕИО , 93/67/ЕИО , 
93/105/ЕО и 2000/21/ЕО на Комисията . ОВ L 396, 30.12.2006 г., стр. 1. 
(7) OECD (2002). Test Guideline 405. OECD Guideline for Testing of 
Chemicals. Acute eye irritation/corrosion. На разположение  на 
адрес : 
[http://www.oecd.org/document/40/0,2340,en_2649_34 377_37051368 
_1_1_1_1,00.html]  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 699
 
(8) ICCVAM (2007). ICCVAM Recommended ICE Test Method 
Protocol. In: ICCVAM Test Method Evaluation Report -  In Vitro  
Ocular Toxicity Test Methods for Identifying Ocular Severe Irritants and Corrosives. Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative Methods (ICCVAM) and the National 
Toxicology Program (NTP) Interagency Center for the Evaluation of 
Alternative Toxicological Methods (NICEATM). NIH Publication No.: 07-4517. На разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ocu_tmer.htm]  
(9) ICCVAM. (2006). Current Status of  In Vitro  Test Methods for Iden ­
tifying Ocular Corrosives and Severe Irritants: Isolated Chicken Eye Test Method. NIH Publication No.: 06-4513. Research Triangle Park: 
National Toxicology Program. На разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ ­
ocu_brd_ice.htm]  
(10) Prinsen, M.K. and Koëter, B.W.M. (1993). Justification of the enuc ­
leated eye test with eyes of slaughterhouse animals as an alternative to the Draize eye irritation test with rabbits.  Fd. Chem. Toxicol.  
31:69-76.
 
(11) INVITTOX (1994). Protocol 80: Chicken enucleated eye test (CEET). 
На разположение  на адрес : 
[http://ecvam.jrc.it/index.htm]  
(12) Balls, M., Botham, P.A., Bruner, L.H. and Spielmann H. (1995). The 
EC/HO international validation study on alternatives to the Draize eye irritation test.  Toxicol. In Vitro  9:871-929.
 
(13) Prinsen, M.K. (1996). The chicken enucleated eye test (CEET): A 
practical (pre)screen for the assessment of eye irritation/corrosion 
potential of test materials.  Food Chem. Toxicol . 34:291-296.  
(14) Chamberlain, M., Gad, S.C., Gautheron, P. and Prinsen, M.K. (1997). 
IRAG Working Group I: Organotypic models for the assessment/ prediction of ocular irritation.  Food Chem. Toxicol.  35:23-37.
 
(15) Siegel, J.D., Rhinehart, E., Jackson, M., Chiarello, L., and the Heal ­
thcare Infection Control Practices Advisory Committee (2007). 
Guideline for Isolation Precautions: Preventing Transmission of Infectious Agents in Healthcare Settings. На разположение  на адрес :
 
[http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf/isolation2007.pdf].  
(16) Maurer, J.K., Parker, R.D. and Jester J.V. (2002). Extent of corneal 
injury as the mechanistic basis for ocular irritation: key findings and recommendations for the development of alternative assays.  Reg. Tox. 
Pharmacol.  36:106-117.
 
(17) Burton, A.B.G., M. York and R.S. Lawrence (1981). The  in vitro  
assessment of severe irritants.  Fd. Cosmet.- Toxicol. - 19, 471-480.  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 700
 
(18) ICCVAM (2006). Background review document, Current Status of  In 
Vitro  Test Methods for Identifying Ocular Corrosives and Severe 
Irritants: Bovine Corneal Opacity and Permeability (BCOP) Test Method. На разположение  на адрес :
 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ocu_brd_bcop.htm]  
(19) ICCVAM (2006). Background review document, Current Status of  In 
Vitro  Test Methods for Identifying Ocular Corrosives and Severe 
IrritantsIsolated Chicken Eye (ICE) Test Method. На разположение  
на адрес : 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/ocutox/ivocutox/ocu_brd_bcop.htm]  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 701
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Точност : Близостта  до съответствие  между  резултатите  от метода  за 
изпитване  и приетите  еталонни  стойности . Тя е мярка  за функционалните  
характеристики  на метода  за изпитване  и един  аспект  на „приложимостта “. 
Често  терминът  се използва  взаимозаменяемо  със „съгласуваност “ и 
означава  делът  на правилните  резултати  от даден  метод  за изпитване . 
Сравнително  контролно  вещество : Вещество , използвано  като норма  за 
сравнение  с изпитваното  вещество . Едно  сравнително  контролно  вещество  
следва  да притежава  следните  свойства ; (i) постоянен  и надежден  изто­  
чник (-ци); (ii) структурно  и функционално  сходство  с класа  на изпитваните  
вещества ; (iii) известни  физични /химични  характеристики ; (iv) 
потвърждаващи  данни  за известни  въздействия , и (v) известна  ефективност  
за постигане  на желаната  реакция  
Роговица : Прозрачната  част на предната  страна  на очната  ябълка , която  
покрива  ириса  и зеницата  и пропуска  светлината  навътре . 
Непрозрачност  на роговицата : Мярка  за степента  на непрозрачност  на 
роговицата  след  експониране  на въздействието  на изпитваното  вещество . 
Повишената  непрозрачност  на роговицата  е показател  за увреждане  на 
роговицата . 
Подуване  на роговицата : Обективно  измерване  при изпитването  ИПО  за 
степента  на разширение  на роговицата  след  експониране  на въздействието  
на изпитваното  вещество . Изразява  се като процентна  стойност  и се 
изчислява  от базовите  (преди  дозиране ) измервания  за дебелината  на 
роговицата  и дебелината , отчитана  през редовни  интервали  от време  след  
експониране  на изпитвания  материал  в изпитване  с ИПО . Степента  на 
подуване  е показател  за увреждането  на роговицата . 
Категория  1 на EPA:  Корозивно  въздействие  (необратимо  разрушаване  на 
очната  тъкан ) или въздействие  на роговицата  или дразнене , траещи  повече  
от 21 дни (1). 
Категория  R41 на ЕС: Получаване  на тъканно  увреждане  на окото  или 
сериозно  физическо  влошаване  на зрението  след  прилагане  на изпитваното  
вещество  по предната  повърхност  на окото , което  не е напълно  обратимо  в 
рамките  на 21 дни след  прилагането  (2). 
Дял на неверните  отрицателни  резултати : Пропорцията  на всички  
невярно  определени  отрицателни  резултати  по даден  метод  за изпитване  
относно  вещества , предизвикващи  положителен  резултат . Това  е един  
показател  за функционалните  характеристики  на метода  за изпитване . 
Дял на неверните  положителни  резултати : Пропорцията  на всички  
невярно  определени  положителни  резултати  по даден  метод  за изпитване  
относно  вещества , предизвикващи  отрицателен  резултат . Това  е един  
показател  за функционалните  характеристики  на метода  за изпитване . 
Задържане  на флуоресцеин : Субективно  измерване  при изпитването  ИПО  
за степента  на задържане  на флуоресцеинов  натрий  от епителните  клетки  на 
роговицата  след  експониране  на изпитваното  вещество . Степента  на 
задържане  на флуоресцеин  е показател  за увреждането  на епителия  на 
роговицата . 
GHS (Глобална  хармонизирана  система  за класифициране  и 
етикетиране  на химикали ): Система , предлагаща  класифициране  на 
химикали  (вещества  и смеси ) според  стандартизирани  видове  и степени  
на физическа , здравна  и екологична  опасност  и разглеждаща  съответни  
съобщителни  елементи , като например  пиктограми , сигнални  думи , 
съобщения  за опасност , съобщения  за предпазни  мерки  и информационни  
листовки  за безопасност , така че те да съобщават  информация  за тяхното  
неблагоприятно  въздействие  с оглед  защита  на хората  (включително  работ­  
одатели , работещи , служители  в транспорта , потребители  и аварийни  служ­  
ители ) и на околната  среда  (3). ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 702
 
Категория  1 по GHS:  Получаване  на тъканно  увреждане  на окото  или 
сериозно  физическо  влошаване  на зрението  след  прилагане  на изпитваното  
вещество  по предната  повърхност  на окото , което  не е напълно  обратимо  в 
рамките  на 21 дни след  прилагането  (3). 
Опасност : Вътрешно  присъщо  свойство  на даден  агент  или ситуация , 
притежаващо  потенциал  да предизвика  неблагоприятни  ефекти  когато  
един  организъм , система  или (суб-)популация  бъдат  експонирани  на този 
агент . 
Отрицателна  контрола : Нетретирано  точно  копие , съдържащо  всички  
компоненти  на дадена  тестова  система . Тази  проба  се провежда  паралелно  
с проби , третирани  с изпитваното  вещество , и с други  контролни  проби , за 
определяне  доколко  разтворителят  взаимодейства  с тестовата  система . 
Вещество  без дразнещо  действие : Веществата , които  не се класифицират  
като вещества  с дразнещо  действие  върху  очите  от Категории  I, II, или III 
на ЕРА ; Категории  R41 или R36 на ЕС; или Категории  1, 2A, или 2B на 
GHS (1)(2)(3).  
Вещество  с корозивно  действие  върху  очите : (а) Вещество , което  
причинява  необратимо  тъканно  увреждане  на окото ; (б) Вещества , които  
се класифицират  като вещества  с дразнещо  действие  върху  очите  от 
Категория  1 на GHS, Категория  I на EPA, или Категория  R41 на ЕС 
(1)(2)(3).  
Вещество  с дразнещо  действие  върху  очите : (а) Вещество , което  
причинява  обратимо  изменение  на окото  след  прилагане  върху  предната  
повърхност  на окото ; (б) Вещества , които  се класифицират  като вещества  
с дразнещо  действие  върху  очите  от Категория  II или III на EPA, Категория  
R36 на ЕС, или Категория  2A или 2B на GHS (1)(2)(3).  
Вещество  със силно  дразнещо  действие  върху  очите : (a) Вещество , което  
причинява  тъканно  увреждане  на окото  след  прилагане  върху  предната  
повърхност  на окото , което  не е обратимо  до 21 дни след  прилагането  или 
причинява  сериозно  физическо  влошаване  на зрението . (б) Вещества , които  се 
класифицират  като вещества  с дразнещо  действие  върху  очите  от Категория  1 
на GHS, Категория  I на EPA, или Категория  R41 на ЕС (1)(2)(3).  
Положителна  контрола : Точно  копие , съдържащо  всички  компоненти  на 
дадена  тестова  система  и третирано  с вещество , за което  е известно , че 
индуцира  положителна  реакция . За да се осигури  да може  да се направи  
оценка  на измененията  във времето  на реакцията  на положителната  
контрола , силата  на острата  реакция  не следва  да е прекомерно  голяма . 
Надеждност : Мярка  за степента , в която  даден  метод  за изпитване  може  да 
бъде  провеждан  възпроизводимо  във времето  в рамките  на и между  
различни  лаборатории , когато  за провеждането  му се използва  един  и същ 
протокол . Оценката  за нея се прави  като се изчислява  между - и вътрешно­  
лабораторната  възпроизводимост  и междулабораторната  повторяемост . 
Микроскоп  с шпалт -лампа : Инструмент , използван  за непосредствен  
оглед  на очите  под увеличение  с биокулярен  микроскоп  чрез създаване  на 
стереоскопично  изправено  изображение . При метода  ИПО  този инструмент  
се използва  за наблюдаване  на предната  структура  на птичите  очи, както  и 
за обективно  измерване  на дебелината  на роговицата  с дълбокомера , с който  
е комплектован . 
Контрола  „разтворител /носител “: Нетретирана  проба , съдържаща  всички  
компоненти  на дадена  тестова  система , включително  разтворителя  или 
носителя , която  е третирана  с проби , обработени  с изпитваното  вещество , 
и с други  контролни  проби , за определяне  на базовата  реакция  на 
обработените  проби  с изпитваното  вещество , разтворено  в същия  разт­  
ворител  или носител . Когато  се изпитва  с паралелна  отрицателна  
контрола  тази проба  показва  също  доколко  разтворителят  или носителят  
взаимодействат  с тестовата  система . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 703
 
Поетапно  изпитване : Стратегия  за стъпаловидно  изпитване , при която  
цялата  съществуваща  информация  за дадено  изпитвано  вещество  се 
разглежда  по конкретен  ред, като на всеки  етап се оценява  значимостта  
на данните  — за определяне  доколко  съществува  достатъчно  информация , 
за да се вземе  решение  за класифициране  на веществото  като опасно , преди  
да се премине  към следващия  етап. Ако дадено  изпитвано  вещество  може  да 
се определи  като вещество  с потенциално  дразнещо  действие  въз основа  на 
съществуващата  информация , не се налага  допълнително  изпитване . Ако 
дадено  изпитвано  вещество  не може  да се определи  като вещество  с поте­  
нциално  дразнещо  действие  въз основа  на съществуващата  информация  се 
провежда  процедура  за поетапно  последователно  изпитване  върху  животни , 
докато  стане  възможно  да се направи  недвусмислена  класификация . 
Валидиран  метод  за изпитване : Метод  за изпитване , за който  са 
извършени  валидиращи  изследвания  за определяне  на приложимостта  
(включително  на точността ) и надеждността  му за конкретна  цел. Важно  
е да се отбележи , че един  валидиран  метод  за изпитване  може  да не 
притежава  достатъчно  функционални  характеристики  по отношение  на 
точността  и надеждността  си, за да се счита  за приложим  за предлаганата  
цел. 
Оценяване  на значимостта  на данните : Процесът  на отчитане  на силните  
и слаби  страни  на различни  видове  информация  за достигане  до и в 
подкрепа  на дадено  заключение  относно  потенциалната  опасност  на едно  
вещество . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 704
 
Допълнение  2 
ОПИТНИ  ХИМИКАЛИ  ЗА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  С ИПО  
Преди  редовно  използване  на метод  за изпитване , който  се основава  на 
настоящия  метод  за изпитване , лабораториите  могат  да докажат  техническа  
компетентност  като правилно  определят  класификацията  за корозивно  
действие  върху  очите  за 10-те вещества , препоръчани  в Таблица  1. Тези  
вещества  са подбрани  като представителни  за редица  реакции  на локално  
дразнещо /корозивно  действие  върху  окото , въз основа  на резултати  от in 
vivo изпитване  със заешки  очи (TG 405) ( т.е. Категории  1, 2A, 2B, или 
Некласифицирано  и неетикетирано  съгласно  глобалната  система  на ОН 
GHS)(3)(7). От друга  страна , предвид  валидираното  предназначение  на 
тези анализи  (т.е. за определяне  само  на вещества  с корозивно / силно  
дразнещо  действие  върху  очите ), съществуват  само  два възможни  тестови  
резултата  за целите  на класифицирането , с които  да се докаже  компете­  
нтност  (вещества  с корозивно /силно  дразнещо  действие  или вещества  без 
корозивно /силно  дразнещо  действие . Други  критерии , които  бяха  
използвани  за подбор  на посочените  вещества  са: наличието  на веществата  
на пазара , съществуването  на висококачествени  in vivo  еталонни  данни  и 
съществуването  на висококачествени  данни  от двата  метода  in vitro , за 
които  се разработва  Ръководство  за изпитване . Поради  тази причина  
веществата  с дразнещо  действие  са подбрани  от препоръчителния  списък  
на ICCVAM с 122 еталонни  вещества  за валидиране  на in vitro  методи  за 
изпитване  на токсичност  върху  очите  (вж. Допълнение  H: Списък  на 
препоръчителни  еталонни  вещества  на ICCVAM)(4). Еталонните  данни  са 
дадени  в документацията  на ICCVAM за метода  за изпитване  за 
непрозрачност  и пропускливост  на говежда  роговица  (НПГР ) и метода  с 
ИПО  (18) (19).  
Таблица  1 
Препоръчвани  вещества  за доказване  на техническа  опитност  по отношение  на метода  ИПО  
Химикал  CASRN Химичен  клас ( 1 ) Физична  форма  In Vivo  Класиф­  
икация  ( 2 ) In Vitro  Класифик­  
ация  ( 3 ) 
Бензалкониев  
хлорид  (5 %) 8001-54-5 Ониево  
съединение  Твърдо  
вещество  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Хлорхексидин  55-56-1 Амин , амидин  Твърдо  
вещество  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Дибензоил -L- 
винена  киселина  2743-38-6 Карбоксилна  
киселина , 
естер  Твърдо  
вещество  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Имидазол  288-32-4 Хетероциклен  Твърдо  
вещество  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Трихлороацетилова  
киселина  (30 %) 76-03-9 Карбонова  
киселина  Течност  Категория  1 Вещество  с 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
2,6-Дихлоробензоил  
хлорид  4659-45-4 Киселинен  
халид  Течност  Категория  2A Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Етил -2-метил  ацето­  
ацетат  609-14-3 Кетон , естер  Течност  Категория  2B Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Амониев  нитрат  6484-52-2 Неорганична  
сол Твърдо  
вещество  Категория  2A Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 705
 
Химикал  CASRN Химичен  клас ( 1 ) Физична  форма  In Vivo  Класиф­  
икация  ( 2 ) In Vitro  Класифик­  
ация  ( 3 ) 
Глицерин  56-81-5 Алкохол  Течност  Неетикетиран  Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
n-Хексан  110-54-3 Въглеводород  
(ацикличен ) Течност  Неетикетиран  Вещество  без 
корозивно /силно  
дразнещо  действие  
Съкращения : CASRN = Номер  по регистъра  на справочната  служба  по химикали  
( 1 ) За всяко  изпитвано  вещество  е определен  химичен  клас, като за целта  се използва  стандартна  схема  за класификация , 
базираща  се на системата  за класификация  MeSH (National Library of Medicine Medical Subject Headings) ( на разположение  
на адрес : http//www.nlm.nih.gov/mesh). 
( 2 ) Базира  се на резултати  от in vivo  изпитване  със заешки  очи (ОИСР  TG 405) и се използва  глобалната  система  GHS на ОН 
(3)(7). 
( 3 ) Базира  се на резултати  от изпитване  за НПГР  и ИПО . ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 706
 
Допълнение  3 
Схеми  на обливащ  апарат  за ИПО  и скоби  за очи 
(Вж. Burton et al. (17) за допълнителни  обширни  описания  на 
обливащия  апарат  и скобите  за очи)
 ▼M2 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 707
 
Б.49. ИЗПИТВАНЕ  IN VITRO  ЗА МИКРОЯДРА  НА КЛЕТКИ  ОТ 
БОЗАЙНИЦИ  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Изпитването  in vitro  за микроядра  (MNvit) представлява  изпитване  за 
генотоксичност  за откриване  на микроядра  (МЯ) в цитоплазмата  на 
интерфазни  клетки . Микроядрата  могат  да произлизат  от ацентрични  
хромозомни  фрагменти  (т.е. с липсващ  центромер ) или от цели  
хромозоми , които  не са в състояние  да се придвижат  към полюсите  
по време  на анафазния  стадий  на клетъчно  делене . Изпитването  
открива  активността  на кластогенните  и анеугенните  химикали  
(вещества  и смеси ) (1) (2) в клетки , които  са преминали  през 
клетъчно  делене  по време  на и след  експозиция  на изпитваното  
вещество . Настоящият  метод  за изпитване  (МИ) позволява  
използването  на протоколи  със и без инхибитор  на полимеризацията  
на актина  — цитохалазин  Б (цитоБ ). Добавянето  на цитоБ  преди  
целевата  митоза  дава възможност  за идентификация  и селективен  
анализ  на честотата  на микроядра  в клетките , които  са преминали  
през една  митоза , тъй като тези клетки  са двуядрени  (3) (4). 
Настоящият  МИ позволява  използването  на протоколи  без блокиране  
на цитокинезата , при условие  че са налице  доказателства  за това, че 
анализираната  популация  на клетки  е преминала  през митоза . 
2. В допълнение  към използването  на изпитването  MNvit за идент­  
ифициране  на химикали  (вещества  и смеси ), които  индуцират  
микроядра , използването  на блокиране  на цитокинезата , имунох­  
имично  маркиране  на кинетохорите  или хибридизация  с центромерни / 
теломерни  проби  (флуоресцентна  in situ  хибридизация  (FISH) също  
може  да предостави  информация  относно  механизмите  на увреждане  
на хромозомите  и образуване  на микроядра  (5) (6) (7) (8) (9) (10) (11) 
(12) (13) (14) (15) (16). Процедурите  на маркиране  и хибридизация  
могат  да бъдат  използвани , когато  е налице  увеличено  образуване  на 
микроядра  и изследователят  пожелае  да определи  дали  увеличението  е 
резултат  от кластогенни  и/или анеугенни  ефекти . 
3. Микроядрата  представляват  увреждане , което  е било  предадено  на 
дъщерните  клетки , докато  хромозомните  аберации , отчетени  в 
метафазните  клетки , могат  да не бъдат  предадени . Тъй като 
микроядрата  в интерфазните  клетки  могат  да бъдат  оценени  относ­  
ително  обективно , лабораторният  персонал  трябва  единствено  да 
определи  дали  клетките  са преминали  през делене  и колко  клетки  
съдържат  микроядро . В резултат  на това препаратите  могат  да бъдат  
оценени  относително  бързо , а анализът  може  да бъде  автоматизиран . 
Поради  това е практично  да се оценят  хиляди  вместо  стотици  клетки  в 
рамките  на едно  третиране , с което  се увеличава  статистическата  
достоверност  на изпитването . Накрая , тъй като микроядрата  могат  да 
се породят  от изоставащи  хромозоми , налице  е потенциал  за откриване  
на агенти , индуциращи  анеуплоидия , които  се изследват  трудно  в 
рамките  на конвенционални  изпитвания  за хромозомни  аберации , 
напр . Указание  за изпитване  473 на ОИСР  (глава  Б.10 от настоящото  
приложение ) (17). При все това изпитването  MNvit не дава възможност  
за разграничаване  на химикалите , индуциращи  полиплоидия , от химик­  
алите , индуциращи  кластогенност , без специални  техники , каквато  е 
техниката  FISH, описана  в точка  2. 
4. Изпитването  MNvit представлява  метод  in vitro , при който  обичайно  се 
използват  култивирани  човешки  клетки  или клетки  на гризачи . Той 
осигурява  изчерпателна  основа  за изследване  на възможността  за 
увреждане  на хромозомите  in vitro , тъй като могат  да бъдат  открити  
както  анеугени , така и кластогени . 
5. Изпитването  MNvit е устойчиво  и ефективно  при разнообразни  типове  
клетки  и при наличието  или липсата  на цитоБ . Налице  са изчерпателни  
данни  в подкрепа  на валидността  на изпитването  MNvit, за което  се 
използват  клетъчни  линии  на гризачи  (CHO, V79, CHL/IU и L5178Y) и 
човешки  лимфоцити  (18) (19) (20) (21) (22) (23) (24) (25) (26) (27) (28) 
(29) (30) (31). Те включват  по-конкретно  данни  от международните  
изпитвания  за валидиране , координирани  от Société Française de  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 708
 
Toxicologie Génétique (SFTG) (18) (19) (20) (21) (22) и от докладите  от 
Международния  семинар  относно  изпитването  за генотоксичност  (4) 
(16). Наличните  данни  също  така бяха  повторно  оценени  в рамките  
на ретроспективно  изследване  за валидиране , основано  на тежестта  
на доказателствата  и извършено  от Европейския  център  за валидиране  
на алтернативните  методи  (ECVAM) към Европейската  комисия , и 
методът  за изпитване  беше  одобрен  като научно  валиден  от Научния  
консултативен  комитет  (НКК ) на ECVAM (32) (33) (34). Беше  описано  
използването  на човешката  лимфобластоидна  клетъчна  линия  TK6 (35), 
клетките  HepG2 (36) (37) и първичната  култура  на клетки  от ембрион  
на сирийски  хамстер  (38), въпреки  че те не са били  използвани  в 
изследвания  за валидиране . 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
6. Използваните  определения  са дадени  в допълнение  1. 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
7. Изпитванията , провеждани  in vitro , по принцип  изискват  използването  
на екзогенен  източник  на метаболитно  активиране , освен  когато  
клетките  са с адекватен  метаболизиращ  капацитет  по отношение  на 
изпитваните  вещества . Екзогенната  система  на метаболитно  активиране  
не възпроизвежда  изцяло  in vivo  условия . Също  така следва  вним­  
ателно  да се избягват  условия , които  биха  довели  до изкуствено  
предизвикани  положителни  резултати , които  не отразяват  присъща  
мутагенност  и които  биха  могли  да се породят  от фактори  като 
подчертани  промени  на рН или осмотичното  налягане  или от високи  
нива  на цитотоксичност  (39) (40) (41). Ако изпитваният  химикал  
причини  промяна  в pH на средата  към момента  на добавянето , pH 
следва  да бъде  коригирано , за предпочитане  чрез буфериране  на 
изходния  разтвор  по такъв  начин , че общият  обем  във всички  
изпитвани  концентрации  и за всички  контроли  да остане  същият . 
8. За целите  на анализиране  на индуцирането  на микроядра  от 
съществено  значение  е митозата  да е настъпила  както  при третирани , 
така и при нетретирани  култури . Най-информативният  стадий  за 
отчитане  на наличието  на микроядра  е в клетки , които  са завършили  
една  митоза  по време  на или след  третиране  с изпитваното  вещество . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
9. Клетъчните  култури  с произход  от хора  или бозайници  се подлагат  на 
въздействието  на изпитваното  вещество  със и без екзогенен  източник  
на метаболитно  активиране , освен  когато  се използват  клетки  с 
адекватен  метаболизиращ  капацитет . Във всички  изпитвания  се 
включват  паралелни  контроли  с разтворителя /носителя  (КН) и полож­  
ителни  контролни  химикали  (ПК). 
10. По време  на и след  експозицията  на изпитваното  вещество  клетките  се 
отглеждат  за период , който  е достатъчен , за да позволи  увреждането  на 
хромозомите  или делителното  вретено  да доведе  до образуването  на 
микроядра  в интерфазните  клетки . За индуциране  на анеуплоидия  
изпитваното  вещество  обикновено  следва  да бъде  налично  по време  
на митозата . Събраните  и оцветените  интерфазни  клетки  се анализират  
за наличието  на микроядра . В идеалния  случай  микроядрата  следва  да 
бъдат  отчетени  само  в онези  клетки , които  са преминали  през митоза  
по време  на експозиция  на изпитваното  вещество  или по време  на 
периода  след  експозиция , ако се използва  такъв . При култури , които  
са били  третирани  с блокер  на цитокинезата , това се постига  с 
отчитане  само  на двуядрените  клетки . При липсата  на блокер  на 
цитокинезата  е важно  да се докаже , че е вероятно  анализираните  
клетки  да са преминали  през клетъчно  делене  по време  на или след  
експозиция  на изпитваното  вещество . За всички  протоколи  е важно  да 
се докаже , че пролиферацията  на клетки  е настъпила  както  в 
контролните , така и в третираните  култури , и степента  на цитотокс­  
ичност  или цитостаза , индуцирана  от изпитваното  вещество , следва  да 
бъде  оценена  в културите  (или в паралелните  култури ), които  се 
оценяват  за наличието  на микроядра . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 709
 
ОПИСАНИЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Препарати  
11. Могат  да бъдат  използвани  култивирани  първични  човешки  
лимфоцити  от периферна  кръв  (5) (19) (42) (43) и редица  клетъчни  
линии  на гризачи , например  клетките  CHO, V79, CHL/IU и L5178Y 
(18) (19) (20) (21) (22) (25) (26) (27) (28) (30). Използването  на други  
клетъчни  линии  и типове  следва  да бъде  обосновано  въз основа  на 
тяхната  доказана  ефективност  в рамките  на изпитването , както  е 
описано  в раздела  „Критерии  за приемливост “. Тъй като фоновата  
честота  на микроядрата  ще окаже  влияние  върху  чувствителността  на 
изпитването , препоръчва  се използването  на типове  клетки  с ниска , 
стабилна  фонова  честота  на образуване  на микроядра . 
12. Човешките  лимфоцити  от периферна  кръв  следва  да бъдат  получени  от 
млади  (на приблизителна  възраст  18—35 години ), здрави  индивиди , 
които  не са пушачи  и за които  не е известно  скорошно  излагане  на 
генотоксични  химикали  или радиация . Броят  на донорите  следва  да 
бъде  посочен , ако се обединят  клетките  от повече  от един  донор  в 
обща  група  за използване . Честотата  на микроядрата  нараства  с 
възрастта  и тази тенденция  е по-изразена  при индивидите  от женски  
пол, отколкото  при индивидите  от мъжки  пол (44), като това следва  да 
бъде  взето  предвид  при подбора  на донорни  клетки  за обединяване  в 
обща  група . 
Среди  и условия  за отглеждане  на културата  
13. При отглеждането  на културата  следва  да се използват  подходяща  
хранителна  среда  и инкубационни  условия  (съдове  за културата , конце­  
нтрация  на СО 2 , температура  и влажност ). Установените  клетъчни  
линии  и щамове  следва  да се проверяват  рутинно  за стабилност  на 
модалния  брой  на хромозомите  и отсъствие  на микоплазмено  
замърсяване  и не следва  да се използват , ако са замърсени  или има 
промени  в модалния  брой  на хромозомите . Следва  да се знае 
нормалното  време  на клетъчен  цикъл  при използваните  условия  за 
отглеждане  на културата  в лабораторията , провеждаща  изпитването . 
Ако се използва  методът  на блокиране  на цитокинезата , тогава  конце­  
нтрацията  на инхибитора  на цитокинезата  следва  да бъде  
оптимизирана  за конкретния  тип клетки  и следва  да се докаже , че тя 
произвежда  добра  реколта  от двуядрени  клетки  за отчитане . 
Приготвяне  на културите  
14. Установени  клетъчни  линии  и щамове : размножават  се клетки  от 
изходни  култури , посяват  се в хранителна  среда  с такава  гъстота , че 
културите  да не достигат  точката  на сливане  в монослоеве  и суспенз­  
ионните  култури  да не достигнат  прекомерна  гъстота  преди  времето  на 
събиране , и се инкубират  при 37 °C.  
15. Лимфоцити : цялостна  кръв , третирана  с антикоагулант  (напр . хепарин ), 
или изолирани  лимфоцити  се култивират  в присъствието  на митоген , 
напр . фитохемаглутинин  (ФХА ), преди  експозиция  на изпитваното  
вещество  и на цитоБ . 
Метаболитно  активиране  
16. Следва  да се използват  екзогенни  метаболизиращи  системи  при 
използването  на клетки  с недостатъчен  ендогенен  метаболичен  
капацитет . Най-често  използваната  система  е постмитохондрична  
фракция  (S9) с добавка  на ко-фактор , приготвена  от черните  дробове  
на гризачи , третирани  с ензимно  индуциращи  агенти  като Ароклор  
1254 (45) (46) или смес  от фенобарбитон  и β-нафтофлавон  (46) (47) 
(48) (49). Последната  комбинация  не противоречи  на Стокхолмската  
конвенция  за устойчивите  органични  замърсители  (50) и Регламент  
(ЕО) № 850/2004 относно  устойчивите  органични  замърсители  (66) и 
е доказано , че е също  толкова  ефективна , колкото  Ароклор  1254 за 
индуцирането  на оксидазите  със смесени  функции  (46) (47) (48) (49). 
Фракцията  S9 обикновено  се използва  в концентрации , вариращи  от 1 
до 10 % (об./об.) в последната  среда  на изпитване . Състоянието  на 
системата  за метаболитно  активиране  може  да зависи  от класа  на 
изпитвания  химикал  и в някои  случаи  може  да е подходящо  да се 
използва  повече  от една  концентрация  на S9. ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 710
 
17. Създадените  чрез генно  инженерство  клетъчни  линии , експресиращи  
специфични  човешки  активиращи  ензими  или активиращи  ензими  на 
гризачи , могат  да премахнат  необходимостта  от екзогенна  система  за 
метаболитно  активиране  и могат  да се използват  като тестклетки . В 
такива  случаи  изборът  на използваните  клетъчни  линии  следва  да е 
научно  обоснован , например  чрез приложимостта  на оксидази  със 
смесени  функции  за метаболизма  на изпитваното  вещество  (51) и 
реагирането  им на известни  кластогени  и анеугени  (вж. отделния  
раздел  „Критерии  за приемливост “). Следва  да се отбележи , че 
изпитваното  вещество  може  да не бъде  метаболизирано  от оксида­  
зата(ите) с изразени  смесени  функции ; в такъв  случай  отрицателните  
резултати  няма  да покажат , че изпитваното  вещество  не може  да 
индуцира  микроядра . 
Приготвяне  на изпитваното  вещество  
18. Твърдите  химикали  следва  да се разтворят  в подходящи  разтворители  
или носители  и ако е необходимо , да се разредят  преди  третиране  на 
клетките . Течните  химикали  могат  да се добавят  директно  в системите  
за изпитване  и/или да се разредят  преди  третирането . Газовете  или 
летливите  химикали  следва  да бъдат  изпитвани  чрез подходящи  
изменения  на стандартните  протоколи , като например  обработване  в 
запечатани  съдове  (52) (53). Следва  да се използват  пресни  препарати  
на изпитваното  вещество , освен  ако данните  за устойчивостта  му 
показват , че то може  да се съхранява . 
Условия  на изпитване  
Разтворители /носители  
19. Разтворителят /носителят  не следва  да реагира  с изпитваното  вещество  
или да е несъвместим  с оцеляването  на клетките  или с поддържането  
на активността  на S9 при използваната  концентрация . Ако се използват  
различни  от добре  утвърдените  разтворители /носители , (напр . вода , 
среда  за клетъчни  култури , диметил  сулфоксид ), използването  им 
следва  да бъде  подкрепено  от данни  за съвместимостта  им с 
изпитваното  вещество  и липсата  им на генетична  токсичност . 
Препоръчва  се винаги  когато  е възможно  първо  да се обмисля  възмож­  
ността  за използването  на воден  разтворител /носител . 
Използване  на цитоБ  като блокер  на цитокинезата  
20. Едно  от най-важните  съображения  при извършването  на изпитването  
MNvit е да се осигури , че оценяваните  клетки  са преминали  през 
митоза  по време  на третирането  или инкубационния  период  след  
третирането , ако се използва  такъв . ЦитоБ  е агентът , който  е бил 
най-широко  използван  за блокиране  на цитокинезата , тъй като той 
инхибира  събирането  на актин  и по този начин  предотвратява  
отделянето  на дъщерни  клетки  след  митоза , което  води  до 
образуването  на двуядрени  клетки  (5) (54) (55). Поради  това 
отчитането  на микроядра  може  да се ограничи  до клетки , които  са 
преминали  през митоза  по време  на или след  третиране . Възде­  
йствието , което  изпитваното  вещество  оказва  върху  кинетиката  на 
клетъчната  пролиферация , може  да бъде  измерено  едновременно . 
ЦитоБ  следва  да бъде  използван  като блокер  на цитокинезата , когато  
се използват  човешки  лимфоцити , тъй като периодите  на клетъчен  
цикъл  ще варират  при различните  култури  и донори  и тъй като не 
всички  лимфоцити  ще реагират  на ФХА  (фитохемаглутинин ). При 
изпитване  на клетъчните  линии  са били  използвани  други  методи , за 
да се прецени  дали  оценяваните  клетки  са претърпели  делене ; тези 
методи  са разгледани  по-долу  (вж. точка  26).  
21. Лабораторията  следва  да определи  подходящата  концентрация  на 
цитоБ  за всеки  тип клетки  за постигане  на оптималната  честота  на 
двуядрени  клетки  в контролните  култури , третирани  с разтворителя / 
носителя . Подходящата  концентрация  на цитоБ  обикновено  е между  3 
и 6 μg/ml. ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 711
 
Измерване  на пролиферацията  на клетки  и цитотоксичността  и 
избиране  на концентрации  на експозиция  
22. При определяне  на най-високата  концентрация  на изпитваното  
вещество , която  да бъде  изпитана , следва  да се избягват  конце­  
нтрациите , които  могат  да доведат  до изкуствено  предизвикани  полож­  
ителни  реакции , например  които  предизвикват  прекомерна  цитотокс­  
ичност , преципитиране  в хранителната  среда  и явни  промени  в pH или 
осмотичното  налягане  (39) (40) (41).  
23. Извършват  се измервания  на пролиферацията  на клетките , за да се 
гарантира , че третираните  клетки  са преминали  през митоза  по време  
на изпитването , както  и че третиранията  са извършени  при подходящи  
нива  на цитотоксичност  (вж. точка  29). Цитотоксичността  следва  да се 
определи  със и без метаболитно  активиране  в клетки , които  изискват  
метаболитно  активиране , като се използва  относителният  ръст  в колич­  
еството  клетки  (RICC) или относителното  удвояване  на 
популации  (RPD) ( вж. допълнение  2 за формули ), освен  когато  се 
употребява  цитоБ . Когато  се употребява  цитоБ , цитотоксичността  
може  да бъде  определена , като се използва  индексът  на 
репликация  (RI) (вж. допълнение  2 за формула ). 
24. Третирането  на култури  с цитоБ  и измерването  на относителните  
честоти  на едноядрени , двуядрени  и многоядрени  клетки  в културата  
осигурява  точен  метод  за количествено  определяне  на ефекта  върху  
пролиферацията  на клетките  и цитотоксичната  или цитостатичната  
активност  на дадено  третиране  (5) и гарантира , че се отчитат  само  
клетки , които  са преминали  през делене  по време  на или след  
третирането . 
25. При изследвания  с цитоБ , цитостазата /цитотоксичността  може  да бъде  
определена  количествено  чрез индекса  на пролиферация  при блокиране  
на цитокинезата  (CBPI) (5) (26) (56) или да бъде  получена  чрез RI от 
поне  500 клетки  на култура  (вж. допълнение  2 за формули ). Когато  се 
използва  цитоБ  за оценка  на пролиферацията  на клетки , CBPI или RI 
следва  да бъдат  определени  от поне  500 клетки  на култура . Тези  
измервания , наред  с другите  измервания , могат  да бъдат  използвани  
за оценяване  на цитотоксичността  чрез сравняване  на стойностите  в 
третираните  и контролните  култури . Оценката  на другите  маркери  за 
цитотоксичност  (напр . сливане , клетъчен  брой , апоптоза , некроза , 
преброяване  на метафази ) може  да предостави  полезна  информация . 
26. При изследвания  без цитоБ  е необходимо  да се докаже , че клетките , 
отчетени  в културата , са преминали  през делене  по време  на или след  
третирането  с изпитваното  вещество , в противен  случай  могат  да се 
получат  погрешно  отрицателни  реакции . Методите , които  са 
използвани , за да се гарантира , че преминалите  през делене  клетки , 
които  се отчитат , включват  инкорпориране  и последващо  откриване  
на бромодеоксиуридин  (BrdU) за идентифициране  на клетки , които  
са се репликирали  (57), образуването  на клонинги , когато  клетките  
от постоянни  клетъчни  линии  се третират  и отчитат  in situ  върху  
микроскопско  предметно  стъкло  (индекс  на пролиферация  (PI)) (25) 
(26) (27) (28), или измерването  на относително  удвояване  на 
популации  (RPD), относителен  ръст  в количеството  клетки  (RICC) 
или други  доказани  методи  (16) (56) (58) (59) ( вж. допълнение  2 за 
формули ). Оценката  на другите  маркери  за цитотоксичност  или 
цитостаза  (напр . сливане , клетъчен  брой , апоптоза , некроза , 
преброяване  на метафази ) може  да предостави  полезна  информация . 
27. Следва  да се оценят  най-малко  три концентрации , които  могат  да 
бъдат  подложени  на анализ . За да се постигне  това, може  да бъде  
необходимо  да се извърши  опит , като се използва  голям  брой  близки  
по стойност  концентрации  и да се анализира  образуването  на 
микроядра  в тези концентрации , като се предостави  подходящият  
диапазон  от цитотоксичности . Алтернативна  стратегия  е да се 
извърши  предварителен  тест за цитотоксичност  с цел стесняване  на 
диапазона  за окончателното  изпитване . 
28. Най-високата  концентрация  следва  да има за цел постигане  на 
цитотоксичност  в размер  на 55 ± 5 %. По-високите  равнища  могат  
да индуцират  увреждане  на хромозомите  като вторичен  ефект  от 
цитотоксичността  (60). Когато  се прояви  цитотоксичност , избраните  
изпитвани  концентрации  следва  да обхващат  диапазон  от цитотокс­  
ичност  в размер  на 55 ± 5 % до малка  или нулева  токсичност . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 712
 
29. Ако не се наблюдава  никаква  цитотоксичност  или преципитат , най- 
високата  изпитвана  концентрация  следва  да съответства  на 0,01 M, 
5 mg/mL или 5 μl/mL, в зависимост  коя от стойностите  е най-ниска . 
В общия  случай  концентрациите , избрани  за анализ , следва  да бъдат  
разграничени  една  от друга  със стойност , непревишаваща  10. За 
изпитвани  вещества , които  показват  стръмна  крива  „концентрация  — 
отговор “, може  да бъде  необходимо  сближаване  на концентрациите  на 
изпитваните  вещества  по стойност , така че културите  в диапазоните  на 
средна  и ниска  токсичност  също  да бъдат  оценени . 
30. Когато  разтворимостта  е ограничаващ  фактор , максималната  конце­  
нтрация , ако не е ограничена  от цитотоксичност , следва  да бъде  най- 
ниската  концентрация , при която  минималният  преципитат  е видим  
при култури , при условие  че липсва  каквото  и да било  въздействие  
върху  оценяването . Оценяването  на преципитацията  следва  да бъде  
извършвано  чрез методи  като оптическа  микроскопия , като се 
отбелязва  преципитатът , който  се задържа  или се появява  по време  
на култивирането  (към края  на третирането ). 
Контроли  
31. Във всеки  опит  следва  да бъдат  включени  паралелни  положителни  
контроли  и контроли  с разтворителя /носителя , както  със, така и без 
метаболитно  активиране . 
32. ПК са необходими  за показване  на способността  на използваните  
клетки  и протокола  от изпитването  с цел идентифициране  на класт­  
огените  и анеугените , както  и за потвърждаване  на метаболитния  
капацитет  на препарата  S9. За извършване  на ПК следва  да се 
използват  известни  индуктори  на образуване  на микроядра  при конце­  
нтрации , които  се очаква  да породят  малки , но възпроизводими  увел­  
ичения  над фоновите  равнища , както  и да се демонстрира  чувствит­  
елността  на системата  за изпитване . Концентрациите  на положителната  
контрола  следва  да са избрани  така, че ефектите  да са ясни , но да не 
разкриват  непосредствено  на четящото  устройство  идентичността  на 
кодираните  предметни  стъкла . 
33. Следва  да бъде  използван  кластоген , който  изисква  метаболитно  
активиране  (напр . циклофосфамид ; бензо [а]пирен ), за да се демо­  
нстрира  както  метаболитното  активиране , така и способността  на 
системата  за изпитване  за откриване  на кластогени . Ако са обосновани , 
могат  да се използват  и други  ПК. Тъй като някои  ПК, които  имат  
нужда  от метаболитно  активиране , могат  да бъдат  активни  без 
екзогенно  метаболитно  активиране  при определени  условия  на 
третиране  или в определени  клетъчни  линии , необходимостта  от мета­  
болитно  активиране , както  и активността  на препарата  S9 следва  да 
бъдат  изпитани  в избраната  клетъчна  линия  и при избраните  конце­  
нтрации . 
34. Понастоящем  не са известни  анеугени , които  изискват  метаболитно  
активиране  на тяхната  генотоксична  активност  (16). Възприетите  към 
настоящия  момент  ПК за анеугенна  активност  са например  колхицин  и 
винбластин . Могат  да бъдат  използвани  и други  химикали , ако те 
индуцират  микроядра  единствено  или основно  чрез анеугенна  
активност . С цел избягване  на необходимостта  от две ПК (за класт­  
огенност  и анеугенност ) без метаболитно  активиране , контролата  на 
анеугенността  може  да служи  за ПК без S9, а контролата  на класт­  
огенността  може  да бъде  използвана  за изпитване  на адекватността  на 
използваната  система  за метаболитно  активиране . За клетките , които  
не изискват  S9, следва  да се използват  ПК както  за кластогенността , 
така и за анеугенността . Предложените  ПК са включени  в 
допълнение  3. 
35. Може  да се обмисли  използването  на положителни  контролни  
химикали , принадлежащи  към даден  химичен  клас, когато  са 
налични  подходящи  химикали . Всички  използвани  ПК следва  да 
бъдат  подходящи  за клетъчния  тип и условията  на активиране . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 713
 
36. Контролите , третирани  с разтворителя /носителя , следва  да бъдат  
включвани  за всеки  период  на събиране . В допълнение  към това 
следва  също  да се използват  нетретирани  ОК (които  не се третират  с 
разтворителя /носителя ), освен  когато  са налице  публикувани  или 
лабораторни  контролни  данни  от предишни  изследвания , показващи , 
че от избрания  разтворител  при използваната  концентрация  не се 
предизвикват  генотоксични  или други  делеционни  ефекти . 
ПРОЦЕДУРА  НА ИЗПИТВАНЕ  
График  на третиране  
37. За да се увеличи  в максимална  степен  вероятността  за откриване  на 
анеуген  или кластоген , действащ  на конкретен  стадий  от клетъчния  
цикъл , е важно  достатъчен  брой  клетки  да бъдат  третирани  с изпитваното  
вещество  по време  на всички  стадии  на техните  клетъчни  цикли . Поради  
това графикът  на третиране  за клетъчните  линии  и първичните  клетъчни  
култури  може  да се различава  в известна  степен  от графика  за лимфоц­  
итите , които  изискват  митогенна  стимулация , за да започнат  своя клетъчен  
цикъл , и тези въпроси  са разгледани  в точки  41—43 (16).  
38. Теоретичните  съображения , заедно  с публикуваните  данни  (18), 
показват , че повечето  анеугени  и кластогени  ще бъдат  открити  в 
рамките  на кратък  период  на третиране  от не повече  от 3 до 6 часа 
при наличието  и липсата  на S9, последван  от премахване  на 
изпитваното  вещество  и период  на растеж  от 1,5—2,0 клетъчни  
цикъла  (6). Събират  се проби  от клетките  в период , равняващ  се на 
около  1,5—2,0 пъти  обичайната  (т.е. при липса  на третиране ) продъ­  
лжителност  на клетъчния  цикъл  или след  началото , или в края  на 
третирането  (вж. таблица  1). Периодите  на вземане  на проби  или 
възстановяване  могат  да бъдат  удължени , ако е известно  или се 
допуска , че изпитваното  вещество  засяга  продължителността  на 
клетъчния  цикъл  (напр . при изпитване  на нуклеозидни  аналози ). 
39. Поради  потенциалната  цитотоксичност  на препаратите  S9 за култивирани  
клетки  от бозайници , третиране  с удължен  период  на експозиция  с продъ­  
лжителност  1,5—2,0 обичайни  клетъчни  цикъла  се прилага  само  при 
липсата  на S9. При удължения  период  на третиране  се предлагат  
варианти , които  позволяват  третиране  на клетките  с изпитвания  химикал  
при наличието  или липсата  на цитоБ . Тези  варианти  са насочени  към 
ситуации , при които  е възможно  да има опасения , свързани  с възможните  
взаимодействия  между  изпитваното  вещество  и цитоБ . 
40. Предложените  графици  на третиране  на клетките  са представени  в 
таблица  1. Тези  общи  графици  на третиране  могат  да бъдат  
изменяни  в зависимост  от стабилността  или реактивността  на 
изпитваното  вещество  или конкретните  характеристики , свързани  с 
растежа  на използваните  клетки . Всички  третирания  следва  да 
започват  и приключват , докато  клетките  растат  експоненциално . Тези  
графици  са представени  по-подробно  в точки  41—47 по-долу . 
Таблица  1 
Третиране  на клетки  и време  за събиране  за изпитването  MNvit  
Лимфоцити , първични  клетки  и клетъчни  
линии , третирани  с цитоБ  + S9 Извършва  се третиране  за 3—6 часа при 
наличието  на S9; 
премахват  се S9 и средата , в която  се 
извършва  третирането ; 
добавят  се чиста  среда  и цитоБ ; 
събиране  след  период  с продължителността  
на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  цикъла . 
– S9 
Кратка  експозиция  Извършва  се третиране  за 3—6 часа; 
премахва  се средата , в която  се извършва  
третирането ; 
добавят  се чиста  среда  и цитоБ ; 
събиране  след  период  с продължителността  
на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  цикъла . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 714
 
– S9 
Удължена  
експозиция  Вариант  А: извършва  се третиране  в продъ­  
лжение  на 1,5—2 нормални  цикъла  при 
наличието  на цитоБ ; 
в края  на периода  на експозиция  се събира  
клетъчната  реколта . 
Вариант  Б: извършва  се третиране  в продъ­  
лжение  на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  
цикъла ; 
премахва  се изпитваното  вещество ; 
добавят  се чиста  среда  и цитоБ ; 
събиране  след  период  с продължителността  
на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  цикъла . 
Клетъчни  линии  третирани  без цитоБ . 
(Идентични  на графиците  на третиране , описани  по-горе, с изключение  на това, че не се добавя  никакъв  агент  
цитоБ .) 
Лимфоцити , първични  клетки  и клетъчни  линии , третирани  с цитоБ  
41. За лимфоцитите  най-ефикасният  подход  е започване  на експозицията  
на изпитваното  вещество  44—48 часа след  стимулация  с ФХА , когато  
синхронизацията  на циклите  ще е изчезнала  (5). При първоначалното  
изпитване  клетките  се третират  за период  от 3 до 6 часа с изпитваното  
вещество  при липсата  и наличието  на S9. Средата , в която  се извършва  
третирането , се премахва  и се заменя  с чиста  среда , която  съдържа  
цитоБ , а клетките  се събират  след  период  с продължителността  на 
1,5—2,0 нормални  клетъчни  цикъла . 
42. Ако и двете  първоначални  изпитвания  на краткосрочното  (3—6 часа) 
третиране  са отрицателни  или неясни , се използва  последващо  
третиране  с удължен  период  на експозиция  без S9. Налични  са два 
варианта  на третиране , като и двата  са приемливи  в еднаква  степен . 
При все това може  да е по-уместно  да се използва  вариант  А за 
стимулирани  лимфоцити , когато  е вероятно  продължителността  на 
експоненциалния  растеж  да намалее  до 96 часа след  стимулацията . 
Освен  това клетъчните  култури  следва  да не са достигнали  до 
сливане  към момента  на окончателното  взимане  на проби , както  е 
описано  във вариант  Б. 
— Вариант  А: клетките  се третират  с изпитваното  вещество  за период  
от време  с продължителността  на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  
цикъла  и се събират  в края  на периода  на третиране . 
— Вариант  Б: клетките  се третират  с изпитваното  вещество  за период  
от време  с продължителността  на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  
цикъла . Средата , в която  се извършва  третирането , се премахва  и 
се за заменя  с чиста  среда , а клетките  се събират  след  допълн­  
ителен  период  с продължителността  на 1,5—2,0 нормални  
клетъчни  цикъла . 
43. Първичните  клетки  и клетъчните  линии  следва  да бъдат  третирани  по 
начин , подобен  на начина  на третиране  на лимфоцитите , с изключение  
на това, че не е необходимо  да бъдат  стимулирани  с ФХА  за период  от 
44—48 часа. Клетките , различни  от лимфоцити , следва  да бъдат  
изложени  на въздействие  по такъв  начин , че към момента  на 
прекратяване  на изследването  те все още да се намират  в логаритмична  
фаза  на растеж . 
Клетъчни  линии , третирани  без цитоБ  
44. Клетките  следва  да бъдат  третирани  за 3—6 часа при наличие  и при 
липса  на S9. Средата , в която  се извършва  третирането , се премахва  и 
се заменя  с чиста  среда , а клетките  се събират  след  период  с продъ­  
лжителността  на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  цикъла . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 715
 
45. Ако и двете  първоначални  изпитвания  на краткосрочното  (3—6 часа) 
третиране  са отрицателни  или неясни , се използва  последващо  
третиране  с удължен  период  на експозиция  (без S9). Налични  са два 
варианта  на третиране , като и двата  са приемливи  в еднаква  степен : 
— Вариант  А: клетките  се третират  с изпитваното  вещество  за период  
от време  с продължителността  на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  
цикъла  и се събират  в края  на периода  на третиране . 
— Вариант  Б: клетките  се третират  с изпитваното  вещество  за период  
от време  с продължителността  на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  
цикъла . Средата , в която  се извършва  третирането , се премахва  и 
се заменя  с чиста  среда , а клетките  се събират  след  допълнителен  
период  с продължителността  на 1,5—2,0 нормални  клетъчни  
цикъла . 
46. При еднослойните  култури  е възможно  към края  на третирането  с 
продължителност  3—6 часа да присъстват  митотични  клетки  (които  
се идентифицират  като кръгли  и отделящи  се от повърхността ). Тъй 
като тези митотични  клетки  се отделят  лесно , те могат  да се загубят  
при премахване  на средата , съдържаща  изпитваното  вещество . Следва  
да се положат  грижи  те да бъдат  събрани  при измиване  на културите  и 
да бъдат  върнати  в културите , за да се избегне  загубата  на клетки , 
намиращи  се в стадий  на митоза , и на такива , за които  е налице  
риск  от образуване  на микроядра , към момента  на събиране  на 
клетъчната  реколта . 
Брой  на културите  
47. Следва  да се използват  дубликатни  култури  за всяка  концентрация  на 
изпитвано  вещество  и за културите , третирани  с носителя /разтворителя  
и отрицателните  контролни  култури . Когато  чрез лабораторната  база 
данни  от предишни  изследвания  може  да се докаже  минимално  
вариране  между  дубликатните  култури , използването  на единични  
култури  може  да бъде  приемлив  вариант . Ако се използват  единични  
култури , се препоръчва  анализирането  на увеличен  брой  конце­  
нтрации . 
Събиране  на клетки  и подготовка  на предметно  стъкло  
48. Всяка  култура  се събира  и обработва  отделно . Подготовката  на 
клетките  може  да включва  хипотонично  третиране , но тази мярка  не 
е необходима , ако по друг  начин  е постигнато  адекватно  разстилане  на 
клетките . В подготовката  на предметното  стъкло  могат  да бъдат  
използвани  различни  техники , при условие  че е постигната  висококач­  
ествена  подготовка  на клетките  за оценяване . Цитоплазмата  на 
клетките  следва  да бъде  запазена , за да се даде  възможност  за 
откриването  на микроядра  и (в метода  на блокиране  на цитокинезата ) 
надеждното  идентифициране  на двуядрени  клетки . 
49. Предметните  стъкла  могат  да бъдат  оцветявани  чрез използване  на 
различни  методи , като Giemsa или флуоресцентни  специфични  
оцветители  за ДНК  (59). Използването  на специфичен  оцветител  за 
ДНК  (напр . акридин  оранжево  (61) или Хьохст  33258 плюс  пиронин - 
Y (62) може  да елиминира  някои  от артефактите , свързани  с 
използването  на оцветител , който  не е специфичен  за ДНК . Антикин­  
етохорните  антитела , FISH с панцентромерни  ДНК  проби  или 
праймирано  маркиране  in situ  с праймери , специфични  за панце­  
нтромера , заедно  с подходящо  контрастно  оцветяване  на ДНК , могат  
да бъдат  използвани  за идентифициране  на съдържанието  (хромозоми / 
хромозомни  фрагменти ) на микроядрата , ако механистичната  
информация  за тяхното  образуване  представлява  интерес  (15) (16). 
Могат  да бъдат  използвани  и други  методи  за разграничаване  на класт­  
огените  от анеугените , ако те са се доказали  като ефективни . 
Анализ  
50. Всички  предметни  стъкла , включително  тези на разтворителя /носителя  
и на контролите , следва  да се кодират  независимо  едно  от друго  преди  
микроскопския  анализ . Алтернативно , кодираните  проби  могат  да 
бъдат  анализирани  чрез използване  на валидирана , автоматизирана  
система  за поточна  цитометрия  или анализ  на изображения . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 716
 
51. При култури , третирани  с цитоБ , честотата  на микроядрата  следва  да 
бъде  анализирана  при поне  2 000 двуядрени  клетки  на концентрация  
(поне  1 000 двуядрени  клетки  на култура ; две култури  на конце­  
нтрация ). Ако се използват  единични  култури , от тази култура  
следва  да бъдат  отчетени  поне  2 000 двуядрени  клетки  на конце­  
нтрация . Ако за оценяване  при всяка  концентрация  са налични  знач­  
ително  по-малко  от 1 000 двуядрени  клетки  на култура  или по-малко  
от 2 000 при единична  култура  и ако не е открито  значително  увел­  
ичение  на микроядрата , изпитването  следва  да бъде  повторено  с 
използване  на повече  клетки  или при по-малко  токсични  конце­  
нтрации , което  от двете  е уместно . Следва  да се внимава  да не се 
отчитат  двуядрени  клетки  с неправилни  форми  или, когато  двете  
ядра  се различават  в голяма  степен  по размер , двуядрените  клетки  не 
следва  да се бъркат  със слаборазстлани  многоядрени  клетки . Клетките , 
които  съдържат  повече  от две основни  ядра , не следва  да бъдат  
анализирани  за наличието  на микроядра , тъй като базовата  честота  
на микроядрата  може  да бъде  по-висока  при тези клетки  (63) (64). 
Отчитането  на едноядрените  клетки  е приемливо , ако е доказано , че 
изпитваното  вещество  оказва  влияние  върху  активността  на цитоБ . 
52. При клетъчни  линии , изпитвани  без третиране  с цитоБ , микроядрата  
следва  да бъдат  отчетени  при поне  2 000 клетки  на концентрация  (поне  
1 000 клетки  на култура ; две култури  на концентрация ). Когато  се 
използва  само  една  култура  на концентрация , от тази култура  следва  
да бъдат  отчетени  поне  2 000 клетки . 
53. Когато  се употребява  цитоБ , CBPI или RI следва  да бъдат  определени  
за оценка  на пролиферацията  на клетките  (вж. допълнение  2), като се 
използват  поне  500 клетки  на култура . Когато  третиранията  се 
извършват  при липсата  на цитоБ , от съществено  значение  е да бъдат  
предоставени  доказателства , че оценяваните  клетки  са пролиферирали , 
както  е обсъдено  в точки  24—27.  
Критерии  за приемливост  
54. Лаборатория , която  предлага  да използва  изпитването  MNvit, описано  
в този МИ, следва  да докаже  своята  способност  надеждно  и точно  да 
открива  химикали  с известна  анеугенна  и кластогенна  активност , със и 
без метаболитно  активиране , както  и известни  отрицателни  химикали  
чрез използване  на референтните  химикали , изброени  в допълнение  3. 
Като  доказателство  за своята  способност  да извърши  този МИ 
правилно , лабораторията  следва  да предостави  доказателства , че 
клетките , които  се оценяват  за образуване  на микроядра , са 
преминали  през едно  клетъчно  делене , ако изпитването  е проведено  
без използване  на цитоБ . 
55. Химикалите , изброени  в допълнение  3, се препоръчват  за използване  
като референтни  химикали . Могат  да бъдат  включени  химикали  
заместители  или допълнителни  химикали , ако тяхната  активност  е 
известна , ако те индуцират  микроядра  посредством  същите  
механизми  за действие  и ако за тях е доказано , че са приложими  
към химикалите  чрез използване  на процедурата  MNvit. Обосновката  
може  да включва  изследване  за валидиране , използващо  голямо  разно­  
образие  от вещества  или фокусирано  върху  по-тесен  спектър  въз 
основа  на химичния  клас на изпитваното  вещество  или изследвания  
механизъм  на увреждане . 
56. Контролните  култури , третирани  с разтворителя /носителя , и 
нетретираните  култури  следва  да имат  възпроизводимо  ниски  и съгл­  
асувани  честоти  на микроядра  (обикновено  5—25 микроядра /1 000 
клетки  за клетъчните  типове , идентифицирани  в точка  11). Другите  
типове  клетки  могат  да имат  различни  спектри  от реакции , които  
следва  да бъдат  определени , когато  те се валидират  за използване  в 
изпитването  MNvit. Данните  от отрицателните  контроли , контролите  
на разтворителя  и ПК следва  да се използват  за установяване  на диапа­  
зоните  от контроли  от предишни  изследвания . Тези  стойности  следва  
да се използват  при определяне  на адекватността  на едновременните  
НК/ПК за даден  експеримент . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 717
 
57. Ако за изпитването  са предложени  незначителни  промени  на 
протокола  (напр . използване  на автоматизирани  вместо  ръчни  
техники  на оценяване ; използване  на нов тип клетки ), ефективността  
на промяната  следва  да бъде  показана  преди  измененият  протокол  да 
може  да бъде  счетен  за приемлив  за използване . Показването  на 
ефективност  включва  демонстриране , че могат  да се открият  
основните  механизми  на разкъсване  и придобиване  или загуба  на 
хромозоми , както  и че могат  да бъдат  постигнати  подходящи  полож­  
ителни  и отрицателни  резултати  за класа  на отделните  вещества  или 
широкия  спектър  от вещества , които  ще бъдат  изпитвани . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Обработка  на резултатите  
58. Ако се използва  техниката  на блокиране  на цитокинезата , в оценката  
на индуцирането  на микроядра  се използват  само  честотите  на 
двуядрените  клетки  с микроядра  (независимо  от броя  на микроядрата  
в една  клетка ). Отчитането  на броя  на клетките  с едно , две или повече  
ядра  може  да предостави  полезна  информация , но не е задължително . 
59. Следва  да се определят  съпътстващите  измервания  на цитотоксич­  
ността  и/или цитостазата  за всички  третирани  и контролни  култури , 
третирани  с разтворителя /носителя  (58). Следва  да бъдат  изчислени  
CBPI или RI за всички  третирани  и контролни  култури  като 
измервания  на забавяне  на клетъчния  цикъл , когато  се използва  
методът  на блокиране  на цитокинезата . При липса  на цитоБ  следва  
да бъдат  използвани  RPD, RICC или PI (вж. допълнение  2). 
60. Следва  да се предоставят  данни  за отделните  култури . В допълнение  
към това всички  данни  следва  да бъдат  обобщени  в табличен  вид. 
61. Химикалите , които  индуцират  микроядра  в изпитването  Mnvit, 
постигат  това, като индуцират  разкъсване  на хромозоми , загуба  на 
хромозоми  или комбинация  от двете . Последващият  анализ , при 
който  се използват  антикинетохорни  антитела , специфични  за 
центромера  проби  in situ  или други  методи , може  да бъде  използван  
за определяне  дали  механизмът  за индуциране  на микроядра  се дължи  
на кластогенна  и/или анеугенна  активност . 
Оценка  и тълкуване  на резултатите  
62. Няма  изискване  за потвърждаване  на ясна  положителна  или отриц­  
ателна  реакция  чрез допълнително  изпитване . Двузначните  резултати  
могат  да бъдат  изяснени  чрез анализ  на още 1 000 клетки  от всички  
култури  с цел избягване  на маскиране . Ако резултатът  не бъде  изяснен  
при този подход , следва  да бъде  извършено  допълнително  изпитване . 
Изменението  на параметрите  на изследването  с цел разширяване  или 
стесняване  на обхвата  на условията , ако е целесъобразно , следва  да се 
вземе  предвид  при последващите  експерименти . Параметрите  на 
изследването , които  могат  да се изменят , включват  границите  на 
изпитваната  концентрация , подбиране  на подходящия  момент  на 
третиране  и събирането  на клетки  и/или условията  на метаболитно  
активиране . 
63. Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , като 
например  свързано  с концентрацията  увеличение , или статистически  
значимо  увеличение  в броя  на клетките , съдържащи  микроядра . 
Първо  следва  да се разгледа  биологичната  значимост  на резултатите . 
Проучването  дали  наблюдаваните  стойности  са в рамките  на или извън  
границите  на историческата  контрола  може  да осигури  насоки  при 
оценката  на биологичната  значимост  на реакцията . Може  да бъдат  
използвани  подходящи  статистически  методи  като помощно  средство  
за оценка  на резултатите  от изпитването  (65). Резултатите  от статист­  
ическото  изпитване  обаче  следва  да се оценяват  във връзка  със завис­  
имостта  доза—отговор . Възпроизводимостта  и данните  от предишни  
изпитвания  също  следва  да бъдат  взети  предвид . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 718
 
64. Въпреки  че повечето  опити  дават  ясни  положителни  или отрицателни  
резултати , в някои  случаи  наборът  от данни  изключва  категоричната  
преценка  за активността  на изпитваното  вещество . Тези  неясни  или 
съмнителни  реакции  могат  да продължат  да се получават , независимо  
колко  пъти  е повторен  опитът . 
65. Положителните  резултати  от изпитването  MNvit показват , че 
изпитваното  вещество  индуцира  разкъсване  на хромозоми  или загуба  
на хромозоми  в култивирани  клетки  от бозайници . Отрицателните  
резултати  показват , че при използваните  условия  на изпитване  
изпитваното  вещество  не индуцира  разкъсване  на хромозоми  и/или 
придобиване  или загуба  на хромозоми  в култивирани  клетки  от боза­  
йници . 
Протокол  от изпитването  
66. Протоколът  от изпитването  следва  да включва  поне  следната  
информация , когато  тя има отношение  към провеждането  на 
изпитването : 
Изпитван  химикал : 
— идентификационни  данни  и номер  съгласно  химичния  регистър  на 
Службата  за химични  индекси  (CAS номер ) и ЕС номер ; 
— физическа  природа  и чистота ; 
— физикохимични  свойства , които  имат  отношение  към провеждането  
на изпитването ; 
— реактивоспособност  на изпитвания  химикал  с разтворителя / 
носителя  или средата  за клетъчните  култури . 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избора  на разтворител /носител ; 
— разтворимост  и устойчивост  на изпитваното  вещество  в разтворит­  
еля/носителя . 
Клетки : 
— тип и източник  на използваните  клетки ; 
— дали  използваният  тип клетки  е подходящ ; 
— отсъствие  на микоплазма , ако е приложимо ; 
— информация  за продължителността  на клетъчния  цикъл , времето  за 
удвояване  или индекса  на пролиферация ; 
— когато  се използват  лимфоцити , пол, възраст  и брой  на кръвните  
донори , ако е приложимо ; 
— когато  се използват  лимфоцити , дали  на експозиция  са изложени  
цялостната  кръв  или изолирани  лимфоцити ; 
— брой  на пасажи , ако е приложимо ; 
— методи  за поддържане  на клетъчните  култури , ако е приложимо ; 
— модален  брой  на хромозомите ; 
— нормално  (отрицателна  контрола ) време  на клетъчен  цикъл . 
Условия  на изпитване : 
— идентичност  на блокера  на цитокинезата  (напр . цитоБ ), ако се 
използва  такъв , неговата  концентрация  и времетраене  на експоз­  
ицията  на клетките ; 
— обосновка  за избора  на концентрации  и броя  на култури , включ­  
ително  данни  за цитотоксичността  и граници  на разтворимост , ако 
са налични ; 
— състав  на средите , концентрация  на CO  2 , ако е приложимо ; 
— концентрации  на изпитваното  вещество ; ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 719
 
— концентрация  (и/или обем ) на носителя  и добавеното  изпитвано  
вещество ; 
— температура  и време  на инкубация ; 
— времетраене  на третирането ; 
— време  на събиране  след  третирането ; 
— гъстота  на клетките  при посяване , ако е приложимо ; 
— тип и състав  на системата  за метаболитно  активиране , включително  
критерии  за приемливост ; 
— положителни  контролни  химикали  и отрицателни  контроли ; 
— методи  на подготовка  на предметното  стъкло  и използвана  техника  
на оцветяване ; 
— критерии  за идентификация  на микроядрата ; 
— брой  на анализираните  клетки ; 
— методи  за измерване  на цитотоксичността ; 
— всякаква  допълнителна  информация , свързана  с цитотоксичността ; 
— критерии  за считане  на изследванията  за положителни , отрицателни  
или неясни ; 
— използван (и) метод (и) за статистически  анализ ; 
— методи  като използването  на кинетохорно  антитяло  за определяне  
дали  микроядрата  съдържат  цели  хромозоми  или хромозомни  фраг­  
менти , ако е приложимо . 
Резултати : 
— използвано  измерване  на цитотоксичността , напр . CBPI или RI в 
случай  че се използва  метод  на блокиране  на цитокинезата ; RICC, 
RPD или PI, когато  не се използват  методи  на блокиране  на 
цитокинезата ; други  приложими  наблюдения , напр . клетъчно  
сливане , апоптоза , некроза , преброяване  на метафази , честота  на 
двуядрените  клетки ; 
— признаци  на преципитация ; 
— данни  за рН и осмотичното  налягане  на средата  на третиране , ако 
са определени ; 
— определяне  на приемливи  клетки  за анализ ; 
— разпределянето  на едноядрените , двуядрените  и многоядрените  
клетки , ако се използва  метод  на блокиране  на цитокинезата ; 
— брой  на клетките  с микроядра , даден  отделно  за всяка  третирана  и 
контролна  култура , като по целесъобразност  се посочва  дали  са от 
двуядрени  или едноядрени  клетки ; 
— зависимостта  концентрация —отговор , където  е възможно ; 
— данни  за паралелни  отрицателни  контроли  (с разтворителя /нос­  
ителя ) и положителни  контролни  химикали  (концентрации  и разт­  
ворители ); 
— данни  от предишни  изпитвания  за паралелни  отрицателни  контроли  
(с разтворителя /носителя ) и положителни  контролни  химикали , с 
интервали , средни  стойности , стандартно  отклонение  и доверителен  
интервал  (напр . 95 %);  
— статистически  анализ ; p-стойности , ако има такива . 
Обсъждане  на резултатите  
Заключения  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 720
 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) Kirsch-Volders, M. (1997), Towards a validation of the micronucleus test.  
Mutation Res. , 392, 1-4.  
(2) Parry, J.M. and Sors, A. (1993), The detection and assessment of the 
aneugenic potential of environmental chemicals: the European Community 
aneuploidy project,  Mutation Res. , 287, 3-15.  
(3) Fenech, M. and Morley, A.A. (1985), Solutions to the kinetic problem in 
the micronucleus assay,  Cytobios. , 43, 233-246.  
(4) Kirsch-Volders, M., Sofuni, T., Aardema, M., Albertini, S., Eastmond, D., 
Fenech, M., Ishidate, M. Jr, Lorge, E., Norppa, H., Surralles, J., von der Hude, W. and Wakata, A. (2000), Report from the  In Vitro  Micronucleus 
Assay Working Group,  Environ. Mol. Mutagen ., 35, 167-172.
 
(5) Fenech, M. (2007), Cytokinesis-block micronucleus cytome assay,  Nature 
Protocols, 2  (5), 1084-1104.  
(6) Fenech, M. and Morley, A.A. (1986), Cytokinesis-block micronucleus 
method in human lymphocytes: effect of  in-vivo  ageing and low dose 
X-irradiation,  Mutation Res. , 161, 193-198.  
(7) Eastmond, D.A. and Tucker, J.D. (1989), Identification of 
aneuploidy-inducing agents using cytokinesis-blocked human lymphocytes and an antikinetochore antibody,  Environ. Mol. Mutagen. , 13, 34-43.
 
(8) Eastmond, D.A. and Pinkel, D. (1990), Detection of aneuploidy and 
aneuploidy-inducing agents in human lymphocytes using fluorescence  in- 
situ hybridisation with chromosome-specific DNA probes,  Mutation Res. , 
234, 9-20.  
(9) Miller, B.M., Zitzelsberger, H.F., Weier, H.U. and Adler, I.D. (1991), 
Classification of micronuclei in murine erythrocytes: immunofluorescent staining using CREST antibodies compared to  in situ  hybridization with 
biotinylated gamma satellite DNA,  Mutagenesis , 6, 297-302.
 
(10) Farooqi, Z., Darroudi, F. and Natarajan, A.T. (1993), The use of fluo ­
rescence  in-situ  hybridisation for the detection of aneugens in 
cytokinesis-blocked mouse splenocytes,  Mutagenesis , 8, 329-334.  
(11) Migliore, L., Bocciardi, R., Macri, C. and Lo Jacono, F. (1993), Cyto ­
genetic damage induced in human lymphocytes by four vanadium 
compounds and micronucleus analysis by fluorescence  in situ  hybridization 
with a centromeric probe,  Mutation Res. , 319, 205-213.  
(12) Norppa, H., Renzi, L. and Lindholm, C. (1993), Detection of whole chro ­
mosomes in micronuclei of cytokinesis-blocked human lymphocytes by 
antikinetochore staining and  in situ  hybridization,  Mutagenesis , 8, 519-525.  
(13) Eastmond, D.A, Rupa, D.S. and Hasegawa, L.S. (1994), Detection of hyper ­
diploidy and chromosome breakage in interphase human lymphocytes 
following exposure to the benzene metabolite hydroquinone using 
multicolor fluorescence  in situ  hybridization with DNA probes,  Mutation 
Res., 322, 9-20.  
(14) Marshall, R.R., Murphy, M., Kirkland, D.J. and Bentley, K.S. (1996), 
Fluorescence  in situ  hybridisation (FISH) with chromosome-specific 
centromeric probes: a sensitive method to detect aneuploidy,  Mutation 
Res., 372, 233-245.  
(15) Zijno, P., Leopardi, F., Marcon, R. and Crebelli, R. (1996), Analysis of 
chromosome segregation by means of fluorescence  in situ  hybridization: 
application to cytokinesis-blocked human lymphocytes,  Mutation Res. , 
372, 211-219.  
(16) Kirsch-Volders, M., Sofuni, T., Aardema, M., Albertini, S., Eastmond, D., 
Fenech, M., Ishidate Jr., M., Lorge, E., Norppa, H., Surrallés, J., von der 
Hude, W. and Wakata, A. (2003), Report from the  in vitro  micronucleus 
assay working group.  Mutation Res. , 540, 153-163.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 721
 
(17) OECD (1997),  In Vitro Mammalian Chromosome Aberration Test , Test 
Guideline № 473, OECD Guidelines for Testing of Chemicals, OECD, 
Paris. На разположение  на адрес : [[www.oecd.org/env/testguidelines]  
(18) Lorge, E., Thybaud, V., Aardema, M.J., Oliver, J., Wakata, A., Lorenzon G. 
and Marzin, D. (2006), SFTG International collaborative Study on  in vitro  
micronucleus test. I. General conditions and overall conclusions of the study,  Mutation Res. , 607, 13-36.
 
(19) Clare, G., Lorenzon, G., Akhurst, L.C., Marzin, D., van Delft, J., Montero, 
R., Botta, A., Bertens, A., Cinelli, S., Thybaud, V. and Lorge, E. (2006), SFTG International collaborative study on the  in vitro  micronucleus test. II. 
Using human lymphocytes,  Mutation Res. , 607, 37-60.
 
(20) Aardema, M.J., Snyder, R.D., Spicer, C., Divi, K., Morita, T., Mauthe, R.J., 
Gibson, D.P., Soelter, S., Curry, P.T., Thybaud, V., Lorenzon, G., Marzin, 
D. and Lorge, E. (2006), SFTG International collaborative study on the  in 
vitro  micronucleus test, III. Using CHO cells,  Mutation Res. , 607, 61-87.  
(21) Wakata, A., Matsuoka, A., Yamakage, K., Yoshida, J., Kubo, K., Koba ­
yashi, K., Senjyu, N., Itoh, S., Miyajima, H., Hamada, S., Nishida, S., Araki, H., Yamamura, E., Matsui, A., Thybaud, V., Lorenzon, G., 
Marzin, D. and Lorge, E. (2006), SFTG International collaborative study 
on the  in vitro  micronucleus test, IV. Using CHO/IU cells,  Mutation Res. , 
607, 88-124.
 
(22) Oliver, J., Meunier, J.-R., Awogi, T., Elhajouji, A., Ouldelhkim, M.-C., 
Bichet, N., Thybaud, V., Lorenzon, G., Marzin, D. and Lorge, E. (2006), SFTG International collaborative study on the  in vitro  micronucleus test, V. 
Using L5178Y cells,  Mutation Res. , 607, 125-152.
 
(23) Albertini, S., Miller, B., Chetelat, A.A. and Locher, F. (1997), Detailed data 
on in vitro  MNT and  in vitro  CA: industrial experience,  Mutation Res. , 392, 
187-208.  
(24) Miller, B., Albertini, S., Locher, F., Thybaud, V. and Lorge, E. (1997), 
Comparative evaluation of the  in vitro  micronucleus test and the  in vitro  
chromosome aberration test: industrial experience,  Mutation Res. , 392, 45-59.  
(25) Miller, B., Potter-Locher, F., Seelbach, A., Stopper, H., Utesch, D. and 
Madle, S. (1998), Evaluation of the  in vitro  micronucleus test as an alter ­
native to the  in vitro  chromosomal aberration assay: position of the GUM 
Working Group on the  in vitro  micronucleus test. Gesellschaft fur 
Umwelt-Mutations-forschung,  Mutation Res. , 410, 81-116.  
(26) Kalweit, S., Utesch, U., von der Hude, W. and Madle, S. (1999), 
Chemically induced micronucleus formation in V79 cells – comparison of 
three different test approaches,  Mutation Res.  439, 183-190.  
(27) Kersten, B., Zhang, J., Brendler Schwaab, S.Y., Kasper, P. and Müller, L. 
(1999), The application of the micronucleus test in Chinese hamster V79 
cells to detect drug-induced photogenotoxicity,  Mutation Res.  445, 55-71.  
(28) von der Hude, W., Kalweit, S., Engelhardt, G., McKiernan, S., Kasper, P., 
Slacik-Erben, R., Miltenburger, H.G., Honarvar, N., Fahrig, R., Gorlitz, B., Albertini, S., Kirchner, S., Utesch, D., Potter-Locher, F., Stopper, H. and Madle, S. (2000),  In vitro  micronucleus assay with Chinese hamster V79 
cells - results of a collaborative study with  in situ  exposure to 26 chemical 
substances,  Mutation Res ., 468, 137-163.
 
(29) Garriott, M.L., Phelps, J.B. and Hoffman, W.P. (2002), A protocol for the  
in vitro  micronucleus test, I. Contributions to the development of a protocol 
suitable for regulatory submissions from an examination of 16 chemicals with different mechanisms of action and different levels of activity,  
Mutation Res. , 517, 123-134.
 
(30) Matsushima, T., Hayashi, M., Matsuoka, A., Ishidate, M. Jr., Miura, K.F., 
Shimizu, H., Suzuki, Y., Morimoto, K., Ogura, H., Mure, K., Koshi, K. and 
Sofuni, T. (1999), Validation study of the  in vitro  micronucleus test in a 
Chinese hamster lung cell line (CHL/IU),  Mutagenesis , 14, 569-580.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 722
 
(31) Elhajouji, A., and Lorge, E. (2006), Special Issue: SFTG International 
collaborative study on  in vitro  micronucleus test,  Mutation Res. , 607, 1-152.  
(32) ECVAM (2006), Statement by the European Centre for the Validation of 
Alternative Methods (ECVAM) Scientific Advisory Committee (ESAC) on 
the scientific validity of the  in vitro  micronucleus test as an alternative to 
the in vitro  chromosome aberration assay for genotoxicity testing. ESAC 
25 th meeting, 16-17 ноември  2006 г., На разположение  на адрес : 
[http://ecvam.jrc.it/index.htm]  
(33) ESAC (2006), ECVAM Scientific Advisory Committee (ESAC) Peer 
Review, Retrospective Validation of the  In Vitro  Micronucleus Test, 
Summary and Conclusions of the Peer Review Panel, На разположение  
на адрес : [http://ecvam.jrc.it/index.htm]  
(34) Corvi, R., Albertini, S., Hartung, T., Hoffmann, S., Maurici, D., Pfuhler, S, 
van Benthem, J., Vanparys P. (2008), ECVAM Retrospective Validation of  
in vitro  Micronucleus Test (MNT),  Mutagenesis , 23, 271-283.  
(35) Zhang, L.S., Honma, M., Hayashi, M., Suzuki, T., Matsuoka, A. and 
Sofuni, T. (1995), A comparative study of TK6 human lymphoblastoid and L5178Y mouse lymphoma cell lines in the  in vitro  micronucleus test,  
Mutation Res. , 347, 105-115.
 
(36) Ehrlich, V., Darroudi, F., Uhl, M., Steinkellner, S., Zsivkovits, M. and 
Knasmeuller, S. (2002), Fumonisin B  1 is genotoxic in human derived 
hepatoma (HepG2) cells,  Mutagenesis , 17, 257-260.  
(37) Knasmüller, S., Mersch-Sundermann, V., Kevekordes, S., Darroudi, F., 
Huber, W.W., Hoelzl, C., Bichler, J. and Majer, B.J. (2004), Use of human-derived liver cell lines for the detection of environmental and dietary genotoxicants; current state of knowledge,  Toxicol. , 198, 315-328.
 
(38) Gibson, D.P., Brauninger, R., Shaffi, H.S., Kerckaert, G.A., LeBoeuf, R.A., 
Isfort, R.J. and Aardema, M.J. (1997), Induction of micronuclei in Syrian hamster embryo cells: comparison to results in the SHE cell transformation 
assay for National Toxicology Program test chemicals,  Mutation Res. , 392, 
61-70.
 
(39) Scott, D., Galloway, S.M., Marshall, R.R., Ishidate, M. Jr., Brusick, D., 
Ashby, J. and Myhr, B.C. (1991), International Commission for Protection Against Environmental Mutagens and Carcinogens, Genotoxicity under extreme culture conditions. A report from ICPEMC Task Group 9,  
Mutation Res. , 257, 147-205.
 
(40) Morita, T., Nagaki, T., Fukuda, I. and Okumura, K. (1992), Clastogenicity 
of low pH to various cultured mammalian cells,  Mutation Res. , 268, 
297-305.  
(41) Brusick, D. (1986), Genotoxic effects in cultured mammalian cells produced 
by low pH treatment conditions and increased ion concentrations,  Environ. 
Mutagen ., 8, 789-886.  
(42) Fenech, M. and Morley, A.A. (1985), Measurement of micronuclei in 
lymphocytes,  Mutation Res. , 147, 29-36.  
(43) Fenech, M. (1997), The advantages and disadvantages of cytokinesis-blood 
micronucleus method,  Mutation Res. , 392, 11-18.  
(44) Bonassi, S., Fenech, M., Lando, C., Lin, Y.P., Ceppi, M., Chang, W.P., 
Holland, N., Kirsch-Volders, M., Zeiger, E., Ban, S., Barale, R., Bigatti, M.P., Bolognesi, C., Jia, C., Di Giorgio, M., Ferguson, L.R., Fucic, A., Lima, O.G., Hrelia, P., Krishnaja, A.P., Lee, T.K., Migliore, L., Mikha ­
levich, L., Mirkova, E., Mosesso, P., Muller, W.U., Odagiri, Y., Scarffi, 
M.R., Szabova, E., Vorobtsova, I., Vral, A. and Zijno, A. (2001), HUman MicroNucleus Project: international database comparison for results with the cytokinesis-block micronucleus assay in human lymphocytes, I. Effect of 
laboratory protocol, scoring criteria and host factors on the frequency of 
micronuclei,  Environ. Mol. Mutagen.  37, 31-45.
 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 723
 
(45) Maron, D.M. and Ames, B.N. (1983), Revised methods for the Salmonella 
mutagenicity test,  Mutation Res. , 113, 173-215.  
(46) Ong, T.-m., Mukhtar, M., Wolf, C.R. and Zeiger, E. (1980), Differential 
effects of cytochrome P450-inducers on promutagen activation capabilities and enzymatic activities of S-9 from rat liver,  J. Environ. Pathol. Toxicol. , 
4, 55-65.
 
(47) Elliott, B.M., Combes, R.D., Elcombe, C.R., Gatehouse, D.G., Gibson, 
G.G., Mackay, J.M. and Wolf, R.C. (1992), Alternatives to Aroclor 1254- induced S9 in  in-vitro  genotoxicity assays.  Mutagenesis , 7, 175-177.
 
(48) Matsushima, T., Sawamura, M., Hara, K. and Sugimura, T. (1976), A safe 
substitute for Polychlorinated Biphenyls as an Inducer of Metabolic Acti ­
vation Systems,  In: de Serres, F.J., Fouts, J. R., Bend, J.R. and Philpot, 
R.M. (eds),  In Vitro  Metabolic Activation in Mutagenesis Testing, Elsevier, 
North-Holland, стр. 85-88.  
(49) Johnson, T.E., Umbenhauer, D.R. and Galloway, S.M. (1996), Human liver 
S-9 metabolic activation: proficiency in cytogenetic assays and comparison 
with phenobarbital/beta-naphthoflavone or Aroclor 1254 induced rat S-9,  
Environ. Mol. Mutagen. , 28, 51-59.  
(50) UNEP (2001), Stockholm Convention on Persistent Organic Pollutants, 
United Nations Environment Programme (UNEP). На разположение  на 
адрес : [http://www.pops.int/]  
(51) Doherty, A.T., Ellard, S., Parry, E.M. and Parry, J.M. (1996), An investi ­
gation into the activation and deactivation of chlorinated hydrocarbons to genotoxins in metabolically competent human cells,  Mutagenesis , 11, 247- 
274.
 
(52) Krahn, D.F., Barsky, F.C. and McCooey, K.T. (1982), CHO/HGPRT 
Mutation Assay: Evaluation of Gases and Volatile Liquids,  In: Tice, 
R.R., Costa, D.L. and Schaich, K.M. (eds), Genotoxic Effects of 
Airborne Agents. New York, Plenum, стр. 91-103.  
(53) Zamora, P.O., Benson, J.M., Li, A.P. and Brooks, A.L. (1983), Evaluation 
of an exposure system using cells grown on collagen gels for detecting highly volatile mutagens in the CHO/HGPRT mutation assay,  Environ. 
Mutagenesis  5, 795-801.
 
(54) Fenech, M. (1993), The cytokinesis-block micronucleus technique: a 
detailed description of the method and its application to genotoxicity studies in human populations,  Mutation Res. , 285, 35-44.
 
(55) Phelps, J.B., Garriott, M.L., and Hoffman, W.P. (2002), A protocol for the  
in vitro  micronucleus test. II. Contributions to the validation of a protocol 
suitable for regulatory submissions from an examination of 10 chemicals 
with different mechanisms of action and different levels of activity,  
Mutation Res. , 521, 103-112.  
(56) Kirsch-Volders, M., Sofuni, T., Aardema, M., Albertini, S., Eastmond, D., 
Fenech, M., Ishidate, M. Jr., Kirchner, S., Lorge, E., Morita, T., Norppa, H., 
Surralles, J., Vanhauwaert, A. and Wakata, A. (2004), Corrigendum to „Report from the  in vitro  micronucleus assay working group“,  Mutation 
Res., 564, 97-100.
 
(57) Pincu, M., Bass, D. and Norman, A. (1984), An improved micronuclear 
assay in lymphocytes,  Mutation Res. , 139, 61-65.  
(58) Lorge, E., Hayashi, M., Albertini, S. and Kirkland, D. (2008), Comparison 
of different methods for an accurate assessment of cytotoxicity in the  in 
vitro  micronucleus test. I. Theoretical aspects,  Mutation Res. , 655, 1-3.  
(59) Surralles, J., Xamena, N., Creus, A., Catalan, J., Norppa, H. and Marcos, R. 
(1995), Induction of micronuclei by five pyrethroid insecticides in whole-blood and isolated human lymphocyte cultures,  Mutation Res. , 341, 
169-184.
 
(60) Galloway, S. (2000), Cytotoxicity and chromosome aberrations  in vitro : 
Experience in industry and the case for an upper limit on toxicity in the 
aberration assay, Environ. Molec.  Mutagenesis  35, 191-201.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 724
 
(61) Hayashi, M., Sofuni, T., and Ishidate, M. Jr. (1983), An Application of 
Acridine Orange Fluorescent Staining to the Micronucleus Test,  Mutation 
Res., 120, 241-247.  
(62) MacGregor, J. T., Wehr, C. M., and Langlois, R. G. (1983), A Simple 
Fluorescent Staining Procedure for Micronuclei and RNA in Erythrocytes 
Using Hoechst 33258 and Pyronin Y,  Mutation Res. , 120, 269-275.  
(63) Hayashi, M., Sofuni, T. and Ishidate, M. Jr. (1983), An application of 
acridine orange fluorescent staining to the micronucleus test,  Mutation 
Res., 120, 241-247.  
(64) Fenech, M., Chang, W.P., Kirsch-Volders, M., Holland, N., Bonassi, S. and 
Zeiger, E. (2003), HUMN project: detailed description of the scoring criteria for the cytokinesis-block micronucleus assay using isolated human lymphocyte cultures,  Mutation Res. , 534, 65-75.
 
(65) Hoffman, W.P., Garriott, M.L. and Lee, C. (2003),  In vitro  micronucleus 
test, In: Encyclopedia of Biopharmaceutical Statistics, Second edition. S. 
Chow (ed.), Marcel Dekker, Inc. New York, NY, стр. 463-467.  
(66) Регламент  (ЕО) № 850/2004 на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
29 април  2004 г. относно  устойчивите  органични  замърсители  и за 
изменение  на Директива  79/117/ЕИО , ОВ L 229, 30.4.2004 г., стр. 5. ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 725
 
Допълнение  1 
Определения  
Анеуген : всяко  вещество  или процес , което /който  води  до анеуплоидия  в 
клетките  или организмите  чрез взаимодействие  с компонентите  на 
митотичния  и мейотичния  цикъл  на клетъчно  делене . 
Анеуплоидия : всяко  отклонение  от обичайния  диплоиден  (или хаплоиден ) 
брой  на хромозомите  на една  или повече  от една  хромозома , но не и на 
пълния (те) набор (и) от хромозоми  (полиплоидия ). 
Апоптоза : програмирана  клетъчна  смърт , характеризираща  се с редица  
етапи , водещи  до разпадане  на клетките  на мембраносвързани  частици , 
които  впоследствие  се премахват  чрез фагоцитоза  или разпространение . 
Клетъчна  пролиферация : увеличение  на броя  на клетките  в резултат  на 
митотично  клетъчно  делене . 
Центромера : ДНК  регион  от хромозома , в който  се свързват  двете  
хроматиди  и върху  който  двете  кинетохори  са прикрепени  една  до друга . 
Кластоген : всяко  вещество  или процес , което /който  причинява  структурни  
хромозомни  аберации  в популации  на клетки  или организми . 
Цитокинеза : процесът  на клетъчно  делене , който  следва  непосредствено  
след  митозата  и в резултат  на който  се образуват  две дъщерни  клетки , 
всяка  от които  съдържа  едно  ядро . 
Индекс  на пролиферация  при блокиране  на цитокинезата  (CBPI):  съотнош­  
ението  на клетки  от второто  делене  в третираната  популация , което  има 
отношение  към нетретираната  контролна  проба  (вж. допълнение  2 за 
формула ). 
Цитостаза : потискане  на растежа  на клетките  (вж. допълнение  2 за 
формула ). 
Цитотоксичност : вредни  въздействия  върху  клетъчната  структура  или 
функция , които  в крайна  сметка  причиняват  клетъчна  смърт . 
Генотоксичен : общ термин , обхващащ  всички  видове  увреждане  на ДНК  
или хромозоми , включително  разкъсвания , пренареждания  на адукти , 
мутации , хромозомни  аберации  и анеуплоидия . Не всички  видове  генот­  
оксични  ефекти  водят  до мутации  или трайно  увреждане  на хромозомите . 
Интерфазни  клетки : клетки , които  не са във фаза  на митоза . 
Кинетохора : белтъчна  структура , разположена  около  центромерата  на 
хромозомата , с която  нишките  на делителното  вретено  се свързват  по 
време  на клетъчното  делене , като така позволяват  методично  придвижване  
на дъщерните  хромозоми  към полюсите  на дъщерните  клетки . 
Микроядра : малки  ядра , отделни  от главното  ядро  и в допълнение  към него , 
на клетките , произведени  по време  на телофазата  на митоза  или мейоза  чрез 
изоставащи  хромозомни  фрагменти  или цели  хромозоми . 
Митоза : делене  на клетъчното  ядро , обикновено  разделено  на профаза , 
прометафаза , метафаза , анафаза  и телофаза . 
Митотичен  индекс : съотношението  на клетките  в метафаза , разделени  на 
броя  клетки , наблюдавани  в клетъчната  популация ; показател  за степента  на 
пролиферация  на тази популация . 
Мутагенен : води  до наследствена  промяна  на ДНК  последователност (и) на 
базовите  двойки  в гени  или на структура  от хромозоми  (хромозомни  
аберации ). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 726
 
Неспособност  за отделяне : неспособност  на двойката  хроматиди  да се 
отделят  една  от друга  и правилно  да се разделят , за да се обособят  като 
хромозоми  за развиващите  се дъщерни  клетки , в резултат  на което  се 
получават  дъщерни  клетки  с анормален  брой  хромозоми . 
Полиплоидия : числови  хромозомни  аберации  в клетки  или организми , 
включващи  цял набор (и) от хромозоми  в противовес  на отделна  
хромозома  или хромозоми  (анеуплоидия ). 
Индекс  на пролиферация  (PI):  метод  за измерване  на цитотоксичността , 
когато  не се използва  цито B (вж. допълнение  2 за формула ). 
Относителен  ръст  в количеството  клетки  (RICC):  метод  за измерване  на 
цитотоксичността , когато  не се използва  цито B (вж. допълнение  2 за 
формула ). 
Относително  удвояване  на популации  (RPD):  метод  за измерване  на 
цитотоксичността , когато  не се използва  цито B (вж. допълнение  2 за 
формула ). 
Индекс  на репликация  (RI):  съотношението  на циклите  на клетъчно  делене , 
през които  е преминала  третирана  култура , в сравнение  с нетретирана  
контрола  по време  на периода  на експозиция  и възстановяване  (вж. 
допълнение  2 за формула ). 
Изпитван  химикал  (също  наричан  изпитвано  вещество ): всяко  вещество  
или смес , изпитвано (а) чрез използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 727
 
Допълнение  2 
Формули  за оценка  на цитотоксичността  
1. Когато  се използва  цитоБ , оценката  на цитотоксичността  следва  да 
бъде  основавана  на индекса  на пролиферация  при блокиране  на 
цитокинезата  (CBPI) или на индекса  на репликация  (RI) (16) (58). CBPI 
посочва  средния  брой  на клетъчните  цикли  на клетка  по време  на 
периода  на експозиция  на цитоБ  и може  да бъде  използван  за изчисляване  
на пролиферацията  на клетките . RI посочва  относителния  брой  на ядрата  в 
третирани  култури  в сравнение  с контролните  култури  и може  да бъде  
използван  за изчисляване  на процента  на цитостаза : 
Процент  на цитостаза  = 100 – 100{(CBPI  T – 1) ÷ (CBPI  C – 1)}  
както  и 
T = култура  за изпитване  с третирания  химикал  
C = контролни  култури , третирани  с носителя  
където : 
CBPI ¼ ððБрой  едноядрени  клеткиÞ þ ð2 Ü брой  двуядрени  клеткиÞ þ ð3 Ü брой  многоядрени  клеткиÞÞ 
ðОбщ  брой  на клеткитеÞ 
Поради  това CBPI на стойност  1 (всички  клетки  са едноядрени ) е еквив­  
алентен  на 100 % цитостаза . 
Цитостаза  = 100 – RI  
RI ¼ ððБрой  двуядрени  клеткиÞ þ ð2 Ü брой  многоядрени  клеткиÞÞ ö ðобщ брой  на клеткитеÞ T 
ððБрой  двуядрени  клеткиÞ þ ð2 Ü брой  многоядрени  клеткиÞÞ ö ðобщ брой  на клеткитеÞ C Ü 100  
T = третирани  култури  
C = контролни  култури  
2. Поради  това RI на стойност  53 % означава , че в сравнение  с броя  на 
клетките , които  са претърпели  делене , за да образуват  двуядрени  и 
многоядрени  клетки  в контролната  култура , само  53 % от този брой  са 
претърпели  делене  в третираната  култура , т.е. 47 % цитостаза . 
3. Когато  не се използва  цитоБ , се препоръчва  оценяване  на цитотокс­  
ичността  въз основа  на относителния  ръст  в количеството  клетки  (RICC) 
или на относителното  удвояване  на популации  (RPD) (58), тъй като и при 
двете  се отчита  съотношението  на популацията  на клетки , които  са 
претърпели  делене . 
RICC ¼ ðУвеличение  на броя  на клетките  в третираните  култури ðкрайно  – началноÞÞ 
ðУвеличение  на броя  на клетките  в контролни  култури ðкрайно  – началноÞÞ Ü 100  
RPD ¼ ðБрой  на удвояванията  на популации  в третирани  културиÞ 
ðБрой  на удвояванията  на популации  в контролни  културиÞ Ü 100 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 728
 
където : 
Удвояване  на популации  = [логаритъм  (брой  на клетките  след  третиране  ÷ 
първоначален  брой  на клетките )] ÷ логаритъм  2 
4. Поради  това RICC или RPD на стойност  53 % показва  47 % цитотокс­  
ичност /цитостаза . 
5. Чрез  използване  на индекса  на пролиферация  (PI) цитотоксичността  
може  да бъде  оценена  чрез преброяване  на броя  на клонингите , които  се 
състоят  от 1 клетка  (cl1), 2 клетки  (cl2), 3 до 4 клетки  (cl4) и 5 до 8 клетки  
(cl8)  
PI ¼ ðð1 Ü cl1Þ þ ð2 Ü cl2Þ þ ð3 Ü cl4Þ þ ð4 Ü cl8ÞÞ 
ðcl1 þ cl2 þ cl4 þ cl8Þ 
6. PI е използван  като ценен  и надежден  параметър  за цитотоксичност  и 
за клетъчни  линии , култивирани  in situ  при липсата  на цитоБ  (25) (26) (27) 
(28). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 729
 
Допълнение  3 
Препоръчителни  референтни  химикали  за оценка  на ефективността  ( 1 ) 
Категория  Химикал  CAS № ЕС № 
1. Кластогени , активни  без метаболитно  активиране  
Цитозин  арабинозид  147-94-4 205-705-9 
Митомицин  С 50-07-7 200-008-6 
2. Кластогени , изискващи  метаболитно  активиране  
Бензо [a]пирен  50-32-8 200-028-5 
Циклофосфамид  50-18-0 200-015-4 
3. Анеугени  
Колхицин  64-86-8 200-598-5 
Винбластин  143-67-9 205-606-0 
4. Вещества , даващи  отрицателен  резултат  
Ди(2-етил -хексил )фталат  117-81-7 204-211-0 
Налидиксова  киселина  389-08-2 206-864-7 
Пирен  129-00-0 204-927-3 
Натриев  хлорид  7647-14-5 231-598-3  
( 1 ) Референтните  химикали  са препоръчителните  за използване  химикали . Заместване  или добавяне  на химикали  към списъка  
на референтните  химикали  може  да бъде  направено , ако е известна  тяхната  активност  и ако те индуцират  микроядра  чрез 
същите  механизми  за действие , както  и ако е доказано , че имат  отношение  към химикалите , които  ще бъдат  изпитвани  чрез 
използването  на процедурата  MNvit. В зависимост  от целта  обосновката  би могла  също  така да включва  изследване  за 
валидиране , използващо  голямо  разнообразие  от вещества  или насочено  към по-тесен  спектър  въз основа  на химичния  клас 
на изпитваното  вещество  или изпитвания  механизъм  на увреждане . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 730
 
Б.50. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ : ИЗСЛЕДВАНЕ  НА 
ЛОКАЛНИТЕ  ЛИМФНИ  ВЪЗЛИ : DA  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Указанията  за изпитването  на химикали  на ОИСР  и методите  за 
изпитване  на ЕС периодично  се преразглеждат  с оглед  на научния  
прогрес , промяната  на регулаторните  нужди  и съображенията , 
свързани  с хуманното  отношение  към животните . Първият  метод  за 
изпитване  (МИ) (Б.42) за определянето  на кожна  сенсибилизация  при 
мишки  — изследването  на локалните  лимфни  възли  (LLNA, Указание  за 
изпитване  429 на ОИСР ) — бе преработен  (1). Публикувана  е подробна  
информация  за валидирането  на LLNA и е направен  преглед  на съотв­  
етните  научни  трудове  (2) (3) (4) (5) (6) (7) (8) (9). При LLNA се 
използва  радиоизотопен  тимидин  или йод за измерване  на прол­  
иферацията  на лимфоцитите  и поради  това изследването  има 
ограничена  употреба , когато  придобиването , използването  или 
обезвреждането  на радиоактивни  вещества  е проблематично . LLNA: 
DA (разработено  от Daicel Chemical Industries, Ltd.) е нерадиоактивно  
изменение  на LLNA, което  определя  количествено  съдържанието  на 
аденозин  трифосфат  (АТР ) чрез биолуминесценция  като индикатор  за 
пролиферацията  на лимфоцитите . Методът  за изпитване  LLNA: DA е 
валидиран , преработен  и препоръчван  от международна  група  за партн­  
ьорска  оценка , тъй като се счита  за полезен  за идентифициране  на 
химикалите , които  са кожни  сенсибилизатори , както  и на химикалите , 
които  не предизвикват  кожна  сенсибилизация  (10) (11) (12) (13). Този  
МИ е предназначен  за оценка  на потенциала  на химикалите  (вещества  и 
смеси ) да предизвикват  кожна  сенсибилизация  при животни . В глава  Б.6 
от настоящото  приложение  и в Указание  за изпитване  406 на ОИСР  се 
използват  изследвания  върху  морски  свинчета , по-специално  макс­  
имизиращ  тест върху  морски  свинчета  и тест на Buehler (14). LLNA 
(глава  Б.42 от настоящото  приложение ; Указание  за изпитване  429 на 
ОИСР ) и двете  му нерадиоактивни  изменения : LLNA: DA ( глава  Б.50 от 
настоящото  приложение ; Указание  за изпитване  442 А на ОИСР ) и 
LLNA: BrdU-ELISA ( глава  Б.51 от настоящото  приложение ; Указание  
за изпитване  442 Б на ОИСР ) — всички  те предоставят  предимство  
спрямо  изследванията  върху  морски  свинчета  в Б.6 и Указание  за 
изпитване  406 на ОИСР  (14), що се отнася  до намаляването  на и 
усъвършенстването  при използването  на животни . 
2. Подобно  на LLNA, LLNA: DA проучва  индукционната  фаза  при кожна  
сенсибилизация  и осигурява  количествени  данни , подходящи  за 
оценяване  на зависимостта  доза—отговор . Освен  това способността  за 
откриване  на кожни  сенсибилизатори  без да е необходимо  използването  
на радиомаркер  за ДНК  елиминира  потенциалната  възможност  за проф­  
есионална  експозиция  на радиоактивност , както  и проблемите , свързани  
с обезвреждането  на отпадъци . Това  от своя  страна  може  да даде  
възможност  за повишаване  на използването  на мишки  за откриване  на 
кожни  сенсибилизатори , което  още повече  би могло  да намали  
използването  на морски  свинчета  за изпитване  на потенциала  за 
кожна  сенсибилизация  (т.е. Б.6; Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) 
(14).  
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
3. Използваните  определения  са дадени  в допълнение  1. 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
4. LLNA: DA е модифициран  метод  LLNA за определяне  на химикалите , 
които  са потенциални  кожни  сенсибилизатори , с известни  ограничения . 
Това  не означава  непременно , че при всички  случаи  следва  да се 
използва  LLNA: DA вместо  LLNA или изследванията  върху  морски  
свинчета  (т.е. Б.6, Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) (14), а по- 
скоро  че изпитването  е равностойно  и може  да бъде  използвано  като ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 731
 
алтернатива , при която  обикновено  положителните  и отрицателните  
резултати  вече не изискват  допълнително  потвърждаване  (10) (11). 
Лабораторията , провеждаща  изпитването , следва  да вземе  предвид  
цялата  налична  информация  за изпитваното  вещество  преди  
провеждането  на изпитването . Тази  информация  ще включва  идент­  
ичността  и химичната  структура  на изпитваното  вещество ; неговите  
физикохимични  свойства ; резултатите  от всякакви  други  in vitro  или 
in vivo  токсикологични  изпитвания  на изпитваното  вещество ; и токсик­  
ологични  данни  за структурно  свързани  вещества . Тази  информация  
следва  да се вземе  предвид , за да се определи  дали  LLNA: DA е 
подходящо  за изпитваното  веществото  (с оглед  на несъвместимостта  
на ограничен  брой  видове  химикали  с LLNA: DA [ вж. точка  5] и като 
помощно  средство  при избора  на доза. 
5. LLNA: DA е in vivo  метод  и вследствие  на това няма  да доведе  до 
преустановяване  на използването  на животни  при оценяването  на 
алергичната  контактна  сенсибилизираща  активност . Той обаче  има поте­  
нциала  да намали  използването  на животни  за тази цел в сравнение  с 
изследванията  върху  морски  свинчета  (Б.6; Указание  за изпитване  406 
на ОИСР ) (14). Освен  това LLNA: DA предлага  съществено  
усъвършенстване  (по-малко  болка  и страдание ) на начина , по който  
животните  се използват  за изпитване  на алергичната  контактна  сенсиб­  
илизация , тъй като за разлика  от Б.6 и Указание  за изпитване  406 на 
ОИСР  LLNA: DA не изисква  да се разкрие  кожна  свръхчувствителност  
след  предизвикване . Въпреки  предимствата  на LLNA: DA пред  Б.6 и 
Указание  за изпитване  406 на ОИСР  (14), съществуват  определени  
ограничения , които  могат  да доведат  до необходимост  от използване  
на Б.6 или на Указание  за изпитване  406 на ОИСР  (напр . изпитването  
на определени  метали , фалшиво  положителни  резултати  при определени  
кожни  дразнители ) [например  някои  видове  повърхностноактивни  
вещества ] (6) (1 и глава  Б.42 от настоящото  приложение ) или разт­  
воримостта  на изпитваното  вещество ). Освен  това химичните  класове  
или вещества , съдържащи  функционални  групи , за които  е доказано , че 
водят  до възможно  объркване  (16), могат  да доведат  до необходимост  
от използване  на изследванията  върху  морски  свинчета  (т.е. Б.6; 
Указание  за изпитване  406 на ОИСР  (14)). В допълнение  се препоръчва  
установените  за LLNA ограничения  (1 и глава  Б.42 от настоящото  прил­  
ожение ) да бъдат  прилагани  и по отношение  на LLNA: DA (10). Освен  
това използването  на LLNA: DA може  да не е подходящо  за изпитвани  
вещества , които  влияят  на нивата  на аденозин  трифосфат  (АТР ) (напр . 
вещества , които  действат  като инхибитори  на АТР ), или такива , които  
влияят  на точното  измерване  на вътреклетъчния  ATP (напр . наличието  
на ATP-разграждащи  ензими , наличието  на извънклетъчен  ATP в 
лимфния  възел ). С изключение  на тези установени  ограничения  
LLNA: DA следва  да се прилага  за изпитване  на всички  вещества , 
освен  ако съществуват  свързани  с тези вещества  свойства , които  
могат  да повлияят  на точността  на LLNA: DA. Освен  това следва  да 
бъде  обърнато  внимание  на възможността  за гранични  положителни  
резултати , когато  са получени  стойности  на стимулационния  
индекс  (SI) между  1,8 и 2,5 (вж. точка  31—32). Това  се основава  на 
базата  данни  от валидирането , състояща  се от 44 вещества , които  
използват  SI ≥ 1,8 (вж. точка  6), за които  изследването  LLNA: DA: 
правилно  е определило  всички  32 сенсибилизатора  при LLNA, но 
неправилно  е определило  три от 12-те вещества , които  не са сенсиб­  
илизатори  при LLNA със стойности  на SI между  1,8 и 2,5 (т.е гранични  
положителни ) (10). При все това, тъй като същият  набор  от данни  беше  
използван  за определяне  на стойностите  на SI и изчисляване  на прог­  
нозните  способности  на изпитването , посочените  резултати  могат  да 
представляват  надценяване  на реалните  прогнозни  способности . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
6. Основният  принцип , залегнал  в LLNA: DA, е, че сенсибилизаторите  
предизвикват  пролиферация  на лимфоцитите  в лимфните  възли , 
дрениращи  мястото  на прилагане  на изпитваното  вещество . Тази  прол­  
иферация  е пропорционална  на дозата  и на действието  на приложения  
алерген  и осигурява  лесен  начин  за получаване  на количествено  
измерване  на сенсибилизацията . Пролиферацията  се измерва  чрез 
сравняване  на средната  пролиферация  във всяка  изпитвана  група  със 
средната  пролиферация  в третираната  с носителя  контролна  група  
(КН). Съотношението  на средната  пролиферация  във всяка  третирана  
група  спрямо  тази в паралелната  третирана  с носителя  контролна  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 732
 
група , наречено  SI, е предварително  определено  и следва  да бъде  ≥ 1,8, 
за да може  изпитваното  вещество  да бъде  оценено  по-нататък  като 
потенциален  кожен  сенсибилизатор . Описаните  тук процедури  се 
основават  на измерването  на съдържанието  на ATP чрез използването  
на биолуминесценция  (за която  е известно , че корелира  с броя  на 
живите  клетки ) (17) за показване  на увеличения  брой  на прол­  
ифериращите  клетки  в дрениращите  аурикуларни  (ушни ) лимфни  
възли  (18) (19). Биолуминесцентният  метод  използва  ензима  луцифераза  
за катализиране  на образуването  на светлина  от ATP и луциферин  
съгласно  следната  реакция : 
ATP + Луциферин  + O 2
 Оксилуцифе puн + AMP  + PP  i + CO  2 + светлина  
Интензитетът  на излъчваната  светлина  е в линейна  зависимост  от 
концентрацията  на ATP и се измерва  чрез използването  на луми­  
нометър . Изпитването  луциферин —луцифераза  е чувствителен  метод  
за количествено  определяне  на ATP и се използва  в широк  кръг  от 
приложения  (20).  
ОПИСАНИЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Избор  на животински  вид 
7. Видът  животно , избран  за това изследване , е мишката . Изследванията  за 
валидиране  на LLNA: DA бяха  проведени  изключително  с мишки  от 
порода  CBA/J, която  поради  това се счита  за предпочитаната  порода  
(12) (13). Използват  се млади  възрастни  мишки  от женски  пол, които  не 
са раждали  и не са бременни . В началото  на изследването  животните  
следва  да бъдат  на възраст  между  8—12 седмици  и отклоненията  в 
теглото  им следва  да бъдат  минимални  и да не превишават  20 % от 
средното  тегло . Алтернативно  могат  да бъдат  използвани  животни  от 
други  породи  и от мъжки  пол, когато  има достатъчно  събрани  данни , 
които  доказват , че не съществува  реакция  при LLNA: DA, която  да 
показва  съществени  различия , обусловени  от пола  и/или породата . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
8. Мишките  следва  да бъдат  групово  отглеждани  (21), освен  ако е 
направена  подходяща  научна  обосновка  за индивидуално  отглеждане  
на мишките . Температурата  в стаята  на опитните  животни  следва  да 
бъде  22 ± 3 °C. Въпреки  че относителната  влажност  следва  да бъде  
поне  30 % и е препоръчително  тя да не надвишава  70 % освен  по 
време  на почистване  на стаята , целта  е относителната  влажност  да се 
поддържа  в интервала  50—60 %. Осветлението  следва  да бъде  
изкуствено , като последователността  е 12 часа светлина , 12 часа 
тъмнина . За храненето  могат  да се използват  обичайните  лабораторни  
диети  с неограничен  достъп  до вода  за пиене . 
Подготовка  на животните  
9. Животните  се избират  произволно , маркират  се, за да е възможно  
индивидуалното  им идентифициране  (но не и чрез маркиране  на 
ушите  им) и се оставят  в клетките  си поне  пет дни преди  започване  
на дозирането , за да се аклиматизират  към лабораторните  условия . 
Преди  да започне  третирането , всички  животни  се изследват , за да се 
потвърди  отсъствието  на видими  кожни  лезии . 
Приготвяне  на разтворите  за дозиране  
10. Твърдите  химикали  следва  да се разтворят  или суспендират  в разтворит­  
ели/носители  и ако е необходимо , да се разредят  преди  прилагането  им 
върху  ушите  на мишките . Течните  химикали  могат  да се прилагат  в 
чист  или разреден  вид преди  дозирането . Неразтворимите  химикали  
като тези, които  обикновено  се наблюдават  в медицинските  изделия , 
следва  да се подложат  на засилена  екстракция  в подходящ  разтворител , 
за да се проявят  всички  екстрахируеми  съставки  за изпитване  преди  
прилагането  им върху  ушите  на мишките . Изпитваните  вещества  
следва  да се приготвят  ежедневно , освен  ако данните  за устойчивостта  
им показват , че те могат  да се съхраняват . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 733
 
Проверка  на надеждността  
11. Положителните  контролни  химикали  (ПК) се използват  за доказване  на 
подходящо  провеждане  на изпитването  чрез реагиране  с достатъчна  и 
възпроизводима  чувствителност  на сенсибилизиращо  изпитвано  
вещество , за което  степента  на реакция  е добре  характеризирана . 
Препоръчва  се включването  на паралелна  положителна  контрола  (ПК), 
защото  така се доказва  компетентността  на лабораторията  успешно  да 
провежда  всяко  изследване  и позволява  оценка  на вътрешно - и межд­  
улабораторната  възпроизводимост  и сравнимост . Някои  регулаторни  
органи  също  изискват  ПК за всяко  изпитване  и поради  това е препоръч­  
ително  потребителите  да се консултират  със съответните  органи  преди  
провеждането  на LLNA: DA. Следователно  се насърчава  рутинното  
използване  на паралелна  ПК, за да се избегне  необходимостта  от 
изследване  на допълнителни  животни  за изпълняването  на тези изис­  
квания , които  биха  могли  да възникнат  в резултат  на използването  на 
периодична  ПК (вж. точка  12). ПК следва  да предизвика  положителна  
LLNA: DA реакция  при ниво  на експозиция , при което  се очаква  
нарастване  на стимулационния  индекс  SI ≥ 1,8 спрямо  отрицателната  
контролна  група  (ОК). Дозата  за ПК следва  да бъде  избрана  така, че да 
не причинява  прекомерно  кожно  дразнене  или системна  токсичност  и 
индукцията  да е възпроизводима , но не прекомерна  (например  SI > 10 
би се считало  за прекомерно ). Предпочитаните  ПК са 25 % хексил­  
канелен  алдехид  (№ 101-86-0 съгласно  химичния  регистър  на 
Службата  за химични  индекси  [CAS]) и 25 % евгенол  (CAS номер  97- 
53-0) в ацетон : зехтин  (4:1, об./об.). Може  да има обстоятелства , при 
които  след  направено  подходящо  обосноваване  могат  да бъдат  
използвани  други  положителни  контроли , отговарящи  на гореп­  
осочените  критерии . 
12. При все че е препоръчително  постоянното  включване  на паралелна  
положителна  контролна  (ПК) група , могат  да съществуват  ситуации , 
при които  периодичното  изпитване  (т.е. на интервали  ≤ 6 месеца ) на 
ПК може  да бъде  подходящо  за лаборатории , които  редовно  провеждат  
LLNA: DA ( т.е. провеждат  LLNA: DA с честота  не по-малко  от веднъж  
месечно ) и имат  създадена  база данни  от предишни  изпитвания  с ПК, 
доказваща  способността  на лабораторията  да получава  възпроизводими  
и точни  резултати  с положителните  контроли . Подходяща  компете­  
нтност  за провеждане  на LLNA: DA може  да бъде  успешно  доказана  
чрез получаването  на последователни  положителни  резултати  с ПК при 
най-малко  10 независими  изпитвания , проведени  в рамките  на разумен  
период  от време  (т.е. по-малко  от една  година ). 
13. Паралелна  ПК група  следва  да се включва  винаги , когато  има 
процедурна  промяна  в LLNA: DA ( например  промяна  на обучения  
персонал , промяна  на материалите  и/или реагентите , с които  се 
провежда  методът  за изпитване , промяна  на оборудването , с което  се 
провежда  методът  за изпитване , промяна  в произхода  на опитните  
животни ), като тези промени  следва  да бъдат  документирани  в 
лабораторни  доклади . Следва  да бъде  обърнато  внимание  на възде­  
йствието  на тези промени  върху  годността  на предварително  създа­  
дената  база данни  от предишни  изпитвания  с оглед  да се определи  
необходимостта  от създаване  на нова  база данни  от предишни  
изпитвания  за документиране  на последователността  на резултатите  с 
ПК. 
14. Изследователите  следва  да са наясно , че решението  за периодично  
провеждане  на изпитване  с ПК вместо  паралелното  му провеждане  
има последици  върху  годността  и приемливостта  на отрицателните  
резултати  от изпитването , получени  без паралелна  ПК по време  на 
интервала  между  всяко  периодично  изпитване  с ПК. Например , ако се 
получи  фалшиво  отрицателен  резултат  при периодичното  изпитване  с 
ПК, отрицателните  резултати  за изпитваното  вещество , получени  по 
време  на интервала  между  последното  приемливо  периодично  
изпитване  с ПК и неприемливото  периодично  изпитване  с ПК, могат  
да бъдат  поставени  под съмнение . Изводите  относно  тези резултати  
следва  внимателно  да бъдат  взети  предвид  при определяне  дали  да се 
включват  паралелни  ПК или само  да се провеждат  периодични  ПК. 
Следва  да се обърне  внимание  и на използването  на по-малко  
животни  в паралелната  ПК група , когато  това е научно  обосновано  и 
ако лабораторията  докаже , въз основа  на конкретните  за лабораторията  
данни  от предишни  изпитвания , че могат  да бъдат  използвани  по-малко  
мишки  (22).  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 734
 
15. Въпреки  че ПК следва  да бъде  изпитвана  в носител , за който  е известно , 
че при прилагането  му се получава  постоянна  реакция  (напр . ацетон : 
зехтин ; 4:1, об./об.), може  да има определени  регулаторни  ситуации , 
при които  ще бъде  необходимо  провеждането  на изпитване  и в 
нестандартен  носител  (клинично /химично  отговаряща  формулация ) 
(23). Ако паралелната  ПК се изпитва  в различен  носител  от изпитваното  
вещество , тогава  следва  да бъде  включена  отделна  третирана  с носителя  
контролна  група  за паралелната  ПК. 
16. В случаи , при които  се оценяват  вещества  от определен  химичен  клас 
или спектър  от реакции , еталонните  вещества  също  могат  да бъдат  от 
полза , за да се докаже , че методът  за изпитване  функционира  правилно  
по отношение  на откриването  на потенциала  за кожна  сенсибилизация  
на тези видове  вещества . Подходящите  еталонни  вещества  следва  да 
притежават  следните  свойства : 
— структурно  и функционално  сходство  с класа  на изпитваното  
вещество ; 
— известни  физични /химични  характеристики ; 
— подкрепящи  данни  от LLNA: DA;  
— подкрепящи  данни  от други  животински  модели  и/или от хора . 
ПРОЦЕДУРА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Брой  на животните  и нива  на дозите  
17. Използват  се минимум  четири  животни  за подложена  на дадена  доза 
група , при минимум  три концентрации  на изпитваното  вещество , плюс  
паралелна  отрицателна  контролна  група  (ОК), третирана  само  с 
носителя  на изпитваното  вещество , както  и ПК (паралелна  или 
скорошна  въз основа  на лабораторната  политика , като се вземат  
предвид  точки  11—15). Следва  да се обмисли  изпитването  на 
множество  дози  на ПК, особено  когато  не се провеждат  редовни  
изпитвания  на ПК. Животните  от контролните  групи  следва  да бъдат  
отглеждани  и третирани  по начин , идентичен  с този, на животните  от 
третираните  групи , с изключение  на това, че липсва  третиране  с 
изпитваното  вещество . 
18. Изборът  на доза и носител  следва  да бъде  основан  на препоръките , 
посочени  в библиографски  бележки  2 и 24. Последователните  дози  
обикновено  се избират  от подходяща  поредица  от концентрации  като 
например  100 %, 50 %, 25 %, 10 %, 5 %, 2,5 %, 1 %, 0,5 % и т.н. 
Изборът  на използваната  поредица  от концентрации  следва  да бъде  
придружен  от подходяща  научна  обосновка . Цялата  съществуваща  токс­  
икологична  информация  (напр . остра  токсичност  и кожно  дразнене ) и 
информацията  за структурните  и физикохимичните  свойства  на предста­  
вляващото  интерес  изпитвано  вещество  (и/или структурно  свързаните  
вещества ) следва  да бъде  взета  предвид  в случай  на наличност  при 
избора  на трите  последователни  концентрации , така че най-високата  
концентрация  да увеличава  в максимална  степен  експозицията , като 
същевременно  се избягва  системната  токсичност  и/или прекомерното  
локално  кожно  дразнене  (24) (25). При липсата  на такава  информация  
може  да е необходимо  първоначално  предварително  скринингово  
изпитване  (вж. точки  21—24).  
19. Носителят  не следва  да пречи  или да оказва  влияние  на резултата  от 
изпитването  и следва  да бъде  избран  въз основа  на способността  си 
максимално  да повишава  разтворимостта , за да се получи  най- 
високата  постижима  концентрация , като същевременно  се приготвя  
подходящ  разтвор /суспензия  за прилагане  на изпитваното  вещество . 
Препоръчителните  носители  са ацетон : зехтин  (4:1, об./об.), N,N-димет­  
илформамид , метилетилкетон , пропилен  гликол  и диметилсулфоксид  
(6), но могат  да бъдат  използвани  и други , при условие  че се предостави  
достатъчна  научна  обосновка . При определени  ситуации  може  да бъде  
необходимо  да се използват  клинично  обусловени  разтворители  или 
търговска  формулация , в която  изпитваното  вещество  се маркира  като 
допълнителна  контрола . Особено  внимание  следва  да бъде  обърнато , за 
да се гарантира , че хидрофилните  изпитвани  вещества  се инкорпорират  
в среда  от носители , която  навлажнява  кожата  и не се изпарява  веднага  
чрез инкорпорирането  на подходящи  солюбилизатори  (напр . 1 % 
плуроник  — Pluronic® L92). Поради  тази причина  носителите  на 
изцяло  водна  основа  трябва  да бъдат  избягвани . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 735
 
20. Обработката  на лимфни  възли  от отделни  мишки  дава възможност  за 
оценка  на вариабилността  между  животните  и за статистическо  
сравнение  на разликата  между  изпитваното  вещество  и измерванията  
в третираната  с носителя  контролна  група  (вж. точка  33). В допълнение  
на това е възможно  оценяване  на възможността  за намаляване  на броя  
на мишките  в ПК група , когато  са събрани  индивидуални  данни  за 
отделните  животни  (22). Освен  това някои  регулаторни  органи  
изискват  събирането  на индивидуални  данни  за отделните  животни . 
Редовното  събиране  на индивидуални  данни  за отделните  животни  
предоставя  предимство  по отношение  на хуманното  отношение  към 
животните , като се избягва  дублирането  на изпитвания , което  би било  
необходимо , ако резултатите  за изпитваното  вещество , които  първон­  
ачално  са събрани  по един  начин  (напр . чрез сборни  данни  за 
животните ), по-късно  бъдат  разглеждани  от регулаторни  органи  с 
други  изисквания  (напр . за събиране  на индивидуални  данни  за 
отделните  животни ). 
Предварителното  скринингово  изпитване  
21. При липсата  на информация  за определянето  на най-високата  доза за 
изпитване  (вж. точка  18) следва  да се извърши  предварително  
скринингово  изпитване , за да се определи  подходящото  ниво  на 
дозата  за изпитване  при LLNA: DA. Целта  на предварителното  
скринингово  изпитване  е да предостави  насоки  за избора  на максим­  
алното  ниво  на дозата , което  да бъде  използвано  в основното  изпитване  
LLNA: DA, в случаите , когато  не е налична  информация  за конце­  
нтрацията , която  причинява  системна  токсичност  (вж. точка  24) и/или 
прекомерно  локално  кожно  дразнене  (вж. точка  23). Изпитваното  макс­  
имално  ниво  на дозата  следва  да бъде  100 % от изпитваното  вещество  
за течности  или максималната  възможна  концентрация  за твърди  
вещества  или суспензии . 
22. Предварителното  скринингово  изпитване  се провежда  при условия , 
идентични  на тези в основното  изпитване  LLNA: DA, с изключение  
на това, че не се оценява  пролиферацията  на лимфните  възли  и могат  
да бъдат  използвани  по-малко  животни  за подложена  на дадена  доза 
група . Предлага  се използването  на едно  или две животни  за 
подложена  на дадена  доза група . Всички  мишки  се наблюдават  
ежедневно  за всякакви  клинични  признаци  за системна  токсичност  
или локално  дразнене  на мястото  на прилагане . Телесните  тегла  се 
записват  преди  изпитването  и преди  завършването  му (ден 8). И двете  
уши на всяка  мишка  се наблюдават  за еритема  и резултатите  се отчитат , 
като се използва  таблица  1 (25). Измерванията  на дебелината  на ушите  
се правят , като се използва  измервателен  уред  за дебелината  (напр . 
цифров  микрометър  или измервателен  уред  за дебелина  Peacock Dial) 
в ден 1 (преди  дозирането ), ден 3 (приблизително  48 часа след  първата  
доза), ден 7 (24 часа преди  приключването ) и ден 8. Освен  това 
дебелината  на ушите  в ден 8 би могла  да бъде  определена  чрез прод­  
упчване  на ушите  и определяне  на теглото  на взетите  продупчени  части , 
което  следва  да се извърши  след  като животните  бъдат  умъртвени  по 
хуманен  начин . Показател  за прекомерно  локално  дразнене  е балова  
оценка  на еритемата  ≥ 3 и/или дебелина  на ушите  в размер  на 
≥ 25 % в който  и било  от дните  с измервания  (26) (27). Най-високата  
доза, избрана  за основното  изпитване  LLNA: DA, ще бъде  следващата  
по-ниска  доза от поредицата  от концентрации  в предварителното  
скринингово  изпитване  (вж. точка  18), която  не причинява  системна  
токсичност  и/или прекомерно  локално  кожно  дразнене . 
Таблица  1 
Оценки  на еритемата  
Наблюдение  Балова  оценка  
Отсъствие  на еритема  0 
Много  слаба  еритема  (едва забележима ) 1 
Добре  изразена  еритема  2  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 736
 
Наблюдение  Балова  оценка  
Умерена  до тежка  еритема  3 
Тежка  еритема  (силно  зачервяване  — с цвят  на цвекло ) до образуване  
на есхара , което  не позволява  да се отчете  баловата  оценка  на 
еритемата  4 
23. В допълнение  към увеличаване  на дебелината  на ушите  с 25 % (26) (27), 
за идентифициране  на дразнители  при LLNA също  така се използва  
статистически  значимо  увеличаване  на дебелината  на ушите  при 
третираните  мишки  в сравнение  с контролните  мишки  (28) (29) (30) 
(31) (32) (33) (34). Въпреки  това, макар  че могат  да възникнат  статист­  
ически  значими  увеличения , когато  дебелината  на ушите  е по-малка  от 
25 %, те не са конкретно  свързани  с прекомерното  дразнене  (30) (31) 
(32) (33) (34).  
24. Следните  клинични  наблюдения  могат  да показват  системна  токсичност  
(35), когато  се използват  като част от интегрална  оценка , и поради  това 
могат  да показват  максималното  ниво  на дозата , което  да се използва  в 
основното  LLNA: DA: промени  във функционирането  на нервната  
система  (напр . пилоерекция , атаксия , тремори  и конвулсии ); промени  
в поведението  (напр . агресивност , промяна  в хигиената  на тялото , 
изразена  промяна  в нивото  на активност ); промени  в начина  на 
дишане  (т.е. промени  в честотата  и интензивността  на дишането  като 
диспнея , задъханост  и хрипове ) и промени  в консумацията  на храна  и 
вода . Освен  това в оценката  следва  да бъдат  взети  предвид  признаци  на 
летаргия  и/или липса  на реакция  и всякакви  клинични  признаци  на 
нещо  повече  от лека или моментна  болка  и страдание  или намаляване  
на телесното  тегло  > 5 % от ден 1 до ден 8, както  и смъртността . 
Умиращите  животни , както  и животните , които  показват  признаци  на 
силна  болка  или страдание , следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  
начин  (36).  
Експериментален  график  на основното  изпитване  
25. Експерименталният  график  на изпитването  е, както  следва : 
— Ден 1: индивидуално  се идентифицира  и записва  теглото  на всяко  
животно  и всяко  клинично  наблюдение . Прилага  се 1 % воден  
разтвор  на натриев  лаурил  сулфат  (SLS) в горната  част на всяко  
ухо, като се използва  четка , потопена  в разтвора  на SLS, за да се 
покрие  цялата  горна  част на всяко  ухо с четири -пет движения . Един  
час след  третирането  със SLS се прилага  се 25 μ1 подходящо  
разреден  разтвор  на изпитваното  вещество , както  и самостоятелно  
носителят  или положителната  контрола  (паралелна  или скорошна  
въз основа  на лабораторната  политика , като се вземат  предвид  
точки  11—15), в горната  част на всяко  ухо. 
— Дни 2, 3 и 7: повтаря  се процедурата  по предварително  третиране  и 
прилагане  на изпитваното  вещество  с 1 % воден  разтвор  на SLS, 
извършена  в ден 1. 
— Дни 4, 5, и 6: няма  третиране . 
— Ден 8: записва  се теглото  на всяко  животно  и всяко  клинично  набл­  
юдение . Приблизително  24—30 часа след  началото  на прилагането  в 
ден 7, животните  се умъртвяват  по хуманен  начин . Дрениращите  
аурикуларни  (ушни ) лимфни  възли  от всяко  ухо на мишката  се 
отрязват  и обработват  отделно  в буферен  физиологичен  разтвор  с 
фосфат  (PBS) за всяко  животно . Подробности  и диаграми  за идент­  
ифицирането  и дисекцията  на лимфните  възлите  могат  да бъдат  
намерени  в позоваване  (22). За допълнително  наблюдение  на 
локалната  кожна  реакция  при основното  изпитване  в протокола  от 
изпитването  могат  да бъдат  включени  допълнителни  параметри  като 
оценяване  на ушната  еритема  или измервания  на дебелината  на 
ушите  (получени  или чрез използването  на измервателен  уред  за 
дебелината , или чрез продупчване  на ушите  и определяне  на 
теглото  на взетите  продупчени  части  при аутопсията ). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 737
 
Приготвяне  на клетъчни  суспензии  
26. От всяка  мишка  се приготвя  клетъчна  суспензия  от единични  клетки , 
която  се приготвя  от клетки  от лимфни  възли  (КЛВ ), отрязани  
двустранно  чрез поставяне  на лимфните  възли  между  две предметни  
стъкла  и упражняване  на лек натиск  за раздробяване  на възлите . След  
потвърждаване , че тъканта  се е разстлала  тънко , двете  предметни  стъкла  
се разделят . Тъканта  се суспендира  на двете  предметни  стъкла  в PBS 
чрез задържане  на всяко  стъкло  на ъгъла  на лабораторната  чаша  и 
промиване  с PBS, като едновременно  с това тъканта  се остъргва  от 
стъклото  с прибор  за остъргване  на клетки . Освен  това лимфните  
възли  на животните  в отрицателната  контролна  група  са малки , 
поради  което  е важно  да се действа  внимателно , за да избегнат  
каквито  и да било  изкуствени  ефекти  върху  стойностите  на SI. Следва  
да бъде  използван  общ обем  от 1 mL PBS за промиване  на двете  
предметни  стъкла . Суспензията , приготвена  от КЛВ  в лабораторна  
чаша , следва  да бъде  хомогенизирана  леко  с прибор  за остъргване  на 
клетки . След  това с микропипета  се събира  аликвотна  част от 20 μL от 
суспензията , приготвена  от КЛВ , като се внимава  да не се отнеме  от 
мембраната , която  е видима  с просто  око, и впоследствие  се смесва  с 
1,98 mL PBS за създаване  на проба  с обем  2 mL. След  това се приготвя  
втора  проба  с обем  2 mL, като се използва  същата  процедура , така че да 
бъдат  приготвени  две проби  за всяко  животно . 
Определяне  на клетъчната  пролиферация  (измерване  на съдържанието  
на аденозинтрифосфат  (АТП ) в лимфоцитите ) 
27. Увеличенията  в съдържанието  на ATP в лимфните  възли  се измерват  
чрез метода  луциферин /луцифераза , като се използва  комплект  за 
измерване  на ATP, с който  се измерва  биолуминесценцията  в относ­  
ителни  единици  луминесценция  (RLU). Времетраенето  на изпитването  
от момента  на умъртвяване  на животното  до измерване  на 
съдържанието  на ATP за всяко  отделно  животно  следва  да е еднакво , 
в рамките  на приблизително  30 минути , тъй като се счита , че 
съдържанието  на ATP постепенно  намалява  с времето  след  умъртвяване  
на животното  (12). Поради  това сериите  от процедури  от отрязването  на 
аурикуларните  (ушни ) лимфни  възли  до измерването  на ATP следва  да 
бъдат  завършени  в рамките  на 20 минути  съгласно  предварително  
определения  времеви  график , който  е един  и същ за всяко  животно . 
Луминесценцията  на ATP следва  да бъде  измерена  във всяка  проба  с 
обем  2 mL, така че да бъдат  събрани  общо  две измервания  на ATP за 
всяко  животно . След  това се определя  средната  луминесценция  на ATP 
и тя се използва  в последващи  изчисления  (вж. точка  30).  
НАБЛЮДЕНИЯ  
Клинични  наблюдения  
28. Всяка  мишка  следва  да бъде  внимателно  наблюдавана  поне  веднъж  
дневно  за всякакви  клинични  признаци  за локално  дразнене  на 
мястото  на прилагане  или за системна  токсичност . Всички  наблюдения  
систематично  се записват , като се водят  дневници  за всяка  мишка . 
Плановете  за наблюдение  следва  да включват  критерии  за бързото  
идентифициране  на мишките , които  показват  признаци  на системна  
токсичност , прекомерно  локално  кожно  дразнене  или корозивност  на 
кожата , за да бъдат  подложени  на евтаназия  (36).  
Телесни  тегла  
29. Както  е посочено  в точка  25, индивидуалните  телесни  тегла  на 
животните  следва  да бъдат  измерени  в началото  на изпитването  и при 
планираното  им умъртвяване  по хуманен  начин . 
ИЗЧИСЛЯВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
30. Резултатите  за всяка  третирана  група  се изразяват  като средния  SI. SI се 
получава  чрез разделяне  на средната  стойност  на RLU/мишка  във всяка  
група , изследвана  с изпитваното  вещество , и в положителната  
контролна  група , на средната  стойност  на RLU/мишка  за контролната  
група , третирана  с разтворителя /носителя . Средната  стойност  на SI за 
контролите , третирани  с носителя , е единица . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 738
 
31. При процеса  на вземане  на решение  даден  резултат  се счита  за полож­  
ителен , когато  SI ≥ 1,8 (10). Силата  на зависимостта  доза—отговор , 
статистическата  значимост  и постоянството  на разтворителя /носителя  
и ПК реакциите  обаче  също  могат  да бъдат  използвани  при 
определянето  дали  даден  граничен  резултат  (т.е. стойност  на SI между  
1,8 и 2,5) да бъде  обявен  за положителен  (2) (3) (37).  
32. При гранична  положителна  реакция  със стойност  на SI между  1,8 и 2,5 
ползвателите  могат  да вземат  предвид  допълнителна  информация  като 
например  зависимостта  доза—отговор , доказателство  за системна  токс­  
ичност  или прекомерно  дразнене  и, където  е подходящо , статист­  
ическата  значимост  заедно  със стойностите  на SI, с цел потвърждаване , 
че тези резултати  са положителни  (10). Следва  да бъде  обърнато  
внимание  на различните  свойства  на изпитваното  вещество , включ­  
ително  дали  то има структурна  връзка  с познати  кожни  сенсибилиз­  
атори , дали  причинява  прекомерно  кожно  дразнене  при мишките , 
както  и какво  е естеството  на наблюдаваната  зависимост  доза—отговор . 
Тези  и други  съображения  подробно  се обсъждат  на друго  място  (41).  
33. Събирането  на данни  на нивото  на отделните  мишки  ще даде  
възможност  за статистически  анализ  на наличието  и степента  на завис­  
имостта  доза—отговор  в данните . Всяка  статистическа  оценка  би могла  
да включва  оценка  на зависимостта  доза—отговор , както  и подходящо  
направени  сравнения  между  изпитваните  групи  (напр . сравнения  по 
двойки  на дозираните  групи  с паралелната  третирана  с разтворителя / 
носителя  контролна  група ). Статистическите  анализи  могат  да включват  
например  линейна  регресия  или изпитването  на William за оценка  на 
тенденциите  в зависимостта  доза—отговор  и изпитването  на Dunnett за 
сравнения  по двойки . При избора  на подходящ  метод  за статистически  
анализ , изследователят  следва  да обърне  внимание  на възможни  
различия  в дисперсиите  и други  свързани  с тях проблеми , които  
могат  да наложат  трансформация  на данните  или провеждане  на 
непараметричен  статистически  анализ . Във всеки  случай  на изсле­  
дователя  може  да му се наложи  да извърши  изчисления  за SI и статист­  
ически  анализи  със и без определени  точки  с данни  (понякога  наричани  
„отклоняващи  се стойности “). 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
34. Данните  следва  да бъдат  обобщени  в табличен  вид, като се посочват  
индивидуалните  RLU стойности  за отделните  животни , средната  
стойност  RLU/животно  за групата , свързаните  с тях граници  на 
отклонение  (напр . SD, SEM) и средният  SI за всяка  подложена  на 
дадена  доза група , сравнени  с паралелната  третирана  с разтворителя / 
носителя  контролна  група . 
Протокол  от изпитването  
35. Протоколът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитвани  и контролни  химикали : 
— идентификационни  данни  (напр . CAS и EC номера , ако са налични ; 
източник , чистота , известни  примеси , номер  на партидата ); 
— физична  форма  и физикохимични  свойства  (напр . летливост , усто­  
йчивост , разтворимост ); 
— ако е смес , състав  и относително  съотношение  в проценти  на елеме­  
нтите . 
Разтворител /носител : 
— идентификационни  данни  (чистота ; концентрация , където  е 
подходящо ; използвано  количество ); 
— обосновка  за избора  на носител . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 739
 
Опитни  животни : 
— произход  на мишките  от порода  CBA;  
— микробиологичен  статус  на животните , ако е известен ; 
— брой  и възраст  на животните ; 
— произход  на животните , условия  на отглеждане , диета  и т.н. 
Условия  на изпитване : 
— източник , номер  на партидата  и данни , свързани  с осигуряването  на 
качеството /контрола  на качеството  на производителя  за комплекта  за 
ATP;  
— подробна  информация  за приготвянето  и прилагането  на 
изпитваното  вещество ; 
— обосновка  за избора  на доза (включително  резултатите  от предварит­  
елното  скринингово  изпитване , ако е проведено ); 
— използвани  концентрации  на изпитваното  вещество  и носителя  и 
общо  количество  на приложеното  изпитвано  вещество ; 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  вид/източник  на диетата , водоизточник ); 
— подробна  информация  за графиците  на третиране  и вземане  на 
проби ; 
— методи  за измерване  на токсичността ; 
— критерии  за считане  на изпитванията  за положителни  или отриц­  
ателни ; 
— подробна  информация  за всякакви  отклонения  от протокола  и 
обяснение  как отклонението  влияе  на планирането  на изпитването  
и на резултатите  от него . 
Проверка  на надеждността : 
— обобщение  на резултатите  от последната  проверка  на надеждността , 
включително  информация  за използваните  изпитвано  вещество , 
концентрация  и носител ; 
— данни  за паралелни  и/или предишни  положителни  контроли  и 
паралелни  отрицателни  контроли  (разтворител /носител ) за 
лабораторията , провеждаща  изпитването ; 
— ако не е била  включена  паралелна  положителна  контрола , се 
посочва  датата  и лабораторният  доклад  на най-скорошното  
периодично  изпитване  с положителна  контрола  и доклад , в който  
подробно  се представят  данните  от предишни  изпитвания  с полож­  
ителни  контроли  на лабораторията  и който  обосновава  защо  не се 
провежда  паралелна  положителна  контрола . 
Резултати : 
— индивидуални  тегла  на мишките  в началото  на дозирането  и при 
планираното  им умъртвяване ; както  и средният  и граница  на 
отклонение  (напр . SD, SEM) за всяка  третирана  група ; 
— признаци  на токсичност  и време  на настъпването  им, включително  
кожно  дразнене  на мястото  на прилагане , ако има такова , за всяко  
животно ; 
— време  на умъртвяване  на животното  и време  на измерване  на ATP за 
всяко  животно ; 
— таблица  на RLU стойностите  и стойностите  на SI за отделните  
мишки  за всяка  третирана  с доза група ; 
— средната  стойност  и съответна  граница  на отклонение  (напр . SD, 
SEM) за RLU/мишка  за всяка  третирана  група  и резултатите  от 
анализа  на отклоняващите  се стойности  за всяка  третирана  група ; ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 740
 
— изчисленият  SI и подходяща  мярка  за вариабилността , която  отчита  
вариабилността  между  животните  както  в групата  с изпитваното  
вещество , така и в контролната  група ; 
— зависимостта  доза—отговор ; 
— статистически  анализи , където  е подходящо ; 
Обсъждане  на резултатите : 
— кратък  коментар  на резултатите , анализ  на зависимостта  
доза—отговор  и статистически  анализ , където  е подходящо , със 
заключение  дали  изпитваното  вещество  следва  да се счита  за 
кожен  сенсибилизатор . 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD (2010),  Skin Sensitisation: Local Lymph Node Assay , Test Guideline 
№ 429, Guidelines for the Testing of Chemicals, OECD, Paris. На разп­  
оложение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(2) Chamberlain, M. and Basketter, D.A. (1996), The local lymph node assay: 
status of validation.  Food Chem, Toxicol ., 34, 999-1002.  
(3) Basketter, D.A., Gerberick, G.F., Kimber, I. and Loveless, S.E. (1996), The 
local lymph node assay: A viable alternative to currently accepted skin sensitisation tests.  Food Chem, Toxicol ., 34, 985-997.
 
(4) Basketter, D.A., Gerberick, G.F. and Kimber, I. (1998), Strategies for iden ­
tifying false positive responses in predictive sensitisation tests.  Food Chem. 
Toxicol. , 36, 327-333.  
(5) Van Och, F.M.M., Slob, W., De Jong, W.H., Vandebriel, R.J. and Van 
Loveren, H. (2000), A quantitative method for assessing the sensitising 
potency of low molecular weight chemicals using a local lymph node assay: employment of a regression method that includes determination of uncertainty margins.  Toxicol ., 146, 49-59.
 
(6) ICCVAM (1999), The murine local lymph node Assay: A test method for 
assessing the allergic contact dermatitis potential of chemicals/compounds: 
The results of an independent peer review evaluation coordinated by the 
Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative Methods (ICCVAM) and the National Toxicology Program Center for the Evaluation of Alternative Toxicological Methods (NICETAM). NIH Publi ­
cation No: 99-4494. Research Triangle Park, N.C. На разположение  на 
адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/docs/immunotox_docs/llna/llnarep.pdf]
 
(7) Dean, J.H., Twerdok, L.E., Tice, R.R., Sailstad, D.M., Hattan, D.G., Stokes, 
W.S. (2001), ICCVAM evaluation of the murine local lymph node assay: II. Conclusions and recommendations of an independent scientific peer review 
panel.  Reg. Toxicol. Pharmacol.  34, 258-273.
 
(8) Haneke, K.E., Tice, R.R., Carson, B.L., Margolin, B.H., Stokes, W.S. 
(2001), ICCVAM evaluation of the murine local lymph node assay: III. 
Data analyses completed by the national toxicology program interagency center for the evaluation of alternative toxicological methods.  Reg. Toxicol. 
Pharmacol. 34 , 274-286.
 
(9) Sailstad, D.M., Hattan, D., Hill, R.N., Stokes, W.S. (2001), ICCVAM 
evaluation of the murine local lymph node assay: I. The ICCVAM 
review process. Reg. Toxicol. Pharmacol.  34, 249-257.  
(10) ICCVAM (2010), ICCVAM Test Method Evaluation Report. Nonradio ­
active local lymph node assay: modified by Daicel Chemical Industries, Ltd., based on ATP content test method protocol (LLNA: DA). NIH Publi ­
cation № 10-7551A/B. Research Triangle Park, NC: National Institute of 
Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/immunotox/llna-DA/TMER.htm]
 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 741
 
(11) ICCVAM (2009), Independent Scientific Peer Review Panel Report: Updated 
validation status of new versions and applications of the murine local lymph 
node assay: a test method for assessing the allergic contact dermatitis potential of chemicals and products. Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : [http://iccvam.ni 
ehs.nih.gov/docs/immunotox_docs/LLNAPRPRept2009.pdf].
 
(12) Idehara, K., Yamagishi, G., Yamashita, K. and Ito, M. (2008), Characteri ­
zation and evaluation of a modified local lymph node assay using ATP content as a non-radio isotopic endpoint. J. Pharmacol. Toxicol. Meth. , 58, 
1-10.
 
(13) Omori, T., Idehara, K., Kojima, H., Sozu, T., Arima, K., Goto, H., Hanada, 
T., Ikarashi, Y., Inoda, T., Kanazawa, Y., Kosaka, T., Maki, E., Morimoto, 
T., Shinoda, S., Shinoda, N., Takeyoshi, M., Tanaka, M., Uratani, M., Usami, M., Yamanaka, A., Yoneda, T., Yoshimura, I. and Yuasa, A. (2008), Interlaboratory validation of the modified murine local lymph 
node assay based on adenosine triphosphate measurement.  J. Pharmacol. 
Toxicol. Meth. , 58, 11-26.
 
(14) OECD (1992),  Skin Sensitisation , Test Guideline № 406, Guidelines 
for Testing of Chemicals, OECD, Paris. На разположение  на адрес : 
[http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(15) Kreiling, R., Hollnagel, H.M., Hareng, L., Eigler, L., Lee, M.S., Griem, P., 
Dreessen, B., Kleber, M., Albrecht, A., Garcia, C. and Wendel, A. (2008), Comparison of the skin sensitising potential of unsaturated compounds as assessed by the murine local lymph node assay (LLNA) and the guinea pig 
maximization test (GPMT).  Food Chem. Toxicol ., 46, 1896-1904.
 
(16) Basketter, D., Ball, N., Cagen, S., Carrillo, J.C., Certa, H., Eigler, D., 
Garcia, C., Esch, H., Graham, C., Haux, C., Kreiling, R. and Mehling, A. (2009), Application of a weight of evidence approach to assessing 
discordant sensitisation datasets: implications for REACH.  Reg. Toxicol. 
Pharmacol ., 55, 90-96.
 
(17) Crouch, S.P., Kozlowski, R., Slater, K.J. and Fletcher J. (1993), The use of 
ATP bioluminescence as a measure of cell proliferation and cytotoxicity.  J. 
Immunol. Meth ., 160, 81-88.  
(18) Ishizaka, A., Tono-oka, T. and Matsumoto, S. (1984), Evaluation of the 
proliferative response of lymphocytes by measurement of intracellular ATP.  
J. Immunol. Meth ., 72, 127-132.  
(19) Dexter, S.J., Cámara, M., Davies, M. and Shakesheff, K.M. (2003), Deve ­
lopment of a bioluminescent ATP assay to quantify mammalian and 
bacterial cell number from a mixed population.  Biomat. , 24, 27-34.  
(20) Lundin A. (2000), Use of firefly luciferase in ATP-related assays of 
biomass, enzymes, and metabolites.  Meth. Enzymol ., 305, 346-370.  
(21) ILAR (1996), Institute of Laboratory Animal Research (ILAR) Guide for 
the Care and Use of Laboratory Animals. 7th ed. Washington, DC: National 
Academies Press.  
(22) ICCVAM (2009), Recommended Performance Standards: Murine Local 
Lymph Node Assay, NIH Publication Number 09-7357, Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Science. На разположение  на адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/docs/ 
immunotox_docs/llna-ps/LLNAPerfStds.pdf]
 
(23) McGarry, H.F. (2007), The murine local lymph node assay: regulatory and 
potency considerations under REACH.  Toxicol ., 238, 71-89.  
(24) Kimber, I., Dearman, R.J., Scholes E.W. and Basketter, D.A. (1994), The 
local lymph node assay: developments and applications.  Toxicol ., 93, 13-31.  
(25) OECD (2002),  Acute Dermal Irritation/Corrosion , Test Guideline № 404, 
Guidelines for Testing of Chemicals, OECD, Paris. На разположение  на 
адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 742
 
(26) Reeder, M.K., Broomhead, Y.L., DiDonato, L. and DeGeorge, G.L. (2007), 
Use of an enhanced local lymph node assay to correctly classify irritants 
and false positive substances.  Toxicologist , 96, 235.  
(27) ICCVAM (2009), Nonradioactive Murine Local Lymph Node Assay: Flow 
Cytometry Test Method Protocol (LLNA: BrdU-FC) Revised Draft 
Background Review Document. Research Triangle Park, NC: National 
Institute of Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/immunotox/fcLLNA/BRDcomple ­
te.pdf]  
(28) Hayes, B.B., Gerber, P.C., Griffey, S.S. and Meade, B.J. (1998), Contact 
hypersensitivity to dicyclohexylcarbodiimide and diisopropylcarbodiimide in female B6C3F1 mice.  Drug. Chem. Toxicol ., 21, 195-206.
 
(29) Homey, B., von Schilling, C., Blumel, J., Schuppe, H.C., Ruzicka, T., Ahr, 
H.J., Lehmann, P. and Vohr, V.W. (1998), An integrated model for the 
differentiation of chemical-induced allergic and irritant skin reactions.  
Toxicol. Appl. Pharmacol. , 153, 83-94.  
(30) Woolhiser, M.R., Hayes, B.B. and Meade, B.J. (1998), A combined murine 
local lymph node and irritancy assay to predict sensitisation and irritancy 
potential of chemicals.  Toxicol. Meth. , 8, 245-256.  
(31) Hayes, B.B. and Meade, B.J. (1999), Contact sensitivity to selected acrylate 
compounds in B6C3F1 mice: relative potency, cross reactivity, and 
comparison of test methods.  Drug Chem. Toxicol ., 22, 491-506.  
(32) Ehling, G., Hecht, M., Heusener, A., Huesler, J., Gamer, A.O., van 
Loveren, H., Maurer, T., Riecke, K., Ullmann, L., Ulrich, P., Vandebriel, 
R. and Vohr, H.W. (2005), A European inter-laboratory validation of alter ­
native endpoints of the murine local lymph node assay: first round.  Toxicol ., 
212, 60-68.  
(33) Vohr, H.W. and Ahr, H.J. (2005), The local lymph node assay being too 
sensitive?  Arch. Toxicol ., 79, 721-728.  
(34) Patterson, R.M., Noga, E. and Germolec, D. (2007), Lack of evidence for 
contact sensitisation by Pfiesteria extract.  Environ. Health Perspect ., 115, 
1023-1028.  
(35) ICCVAM (2009), Report on the ICCVAM-NICEATM/ECVAM/JaCVAM 
Scientific Workshop on Acute Chemical Safety Testing: Advancing  In Vitro  
Approaches and Humane Endpoints for Systemic Toxicity Evaluations. Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health 
Sciences. На разположение  на адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/ 
methods/acutetox/Tox_workshop.htm]
 
(36) OECD (2000),  Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals 
Used in Safety Evaluation , Environmental Health and Safety Monograph 
Series on Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, 
Paris. На разположение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(37) Kimber, I., Hilton, J., Dearman, R.J., Gerberick, G.F., Ryan, C.A., 
Basketter, D.A., Lea, L., House, R.V., Ladies, G.S., Loveless, S.E. and Hastings, K.L. (1998), Assessment of the skin sensitisation potential of topical medicaments using the local lymph node assay: An interlaboratory 
exercise.  J. Toxicol. Environ. Health , 53 563-79.
 
(38) OECD (2005),  Guidance Document on the Validation and International 
Acceptance of New or Updated Test Methods for Hazard Assessment , Envi­
ronment, Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment 
№ 34, ENV/JM/MONO_(2005)14, OECD, Paris. На разположение  на 
адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 743
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Точност : степента  на близост  на съвпадение  на резултатите  от метода  за 
изпитване  и приетите  референтни  стойности . Това  е мярка  за ефективността  
на метода  за изпитване  и един  от аспектите  на неговата  приложимост . 
Терминът  често  се използва  взаимозаменяемо  с термина  „съвпадение “, за 
да се обозначи  делът  на верните  резултати  на даден  метод  за изпитване  (38).  
Еталонно  вещество : вещество , което  предизвиква  или не предизвиква  
сенсибилизация , използвано  като норма  за сравнение  с изпитваното  
вещество . Едно  еталонно  вещество  следва  да притежава  следните  
свойства : i) постоянен  и надежден  източник ; ii) структурно  и функционално  
сходство  с класа  на изпитваните  вещества ; iii) известни  физикохимични  
характеристики ; iv) потвърждаващи  данни  за известни  въздействия ; и v) 
известна  ефективност  за постигане  на желаната  реакция . 
Вещество  с фалшиво  отрицателен  резултат : изпитвано  вещество , 
неправилно  определено  като даващо  отрицателен  резултат  или неактивно  
при даден  метод  за изпитване , докато  в действителност  то дава полож­  
ителен  резултат  или е активно . 
Вещество  с фалшиво  положителен  резултат : изпитвано  вещество , 
неправилно  определено  като даващо  положителен  резултат  или активно  от 
дадено  изпитване , докато  в действителност  то дава отрицателен  резултат  
или е неактивно . 
Опасност : потенциалът  за получаване  на неблагоприятен  за здравето  или 
екологичен  ефект . Неблагоприятният  ефект  се проявява  само  при дост­  
атъчно  голяма  степен  на експозиция . 
Междулабораторна  възпроизводимост : мярка  за степента , в която  разл­  
ичните  квалифицирани  лаборатории , които  използват  един  и същи  
протокол  и изпитват  едни  и същи  изпитвани  вещества , могат  да получат  
качествено  и количествено  сходни  резултати . Междулабораторната  
възпроизводимост  се определя  по време  на процесите  на предварително  
валидиране  и на валидиране  и показва  степента , в която  изпитването  
може  да бъде  трансферирано  успешно  между  лабораториите , също  
наричана  възпроизводимост  между  лабораториите  (38).  
Вътрешнолабораторна  възпроизводимост : определяне  на степента , в която  
квалифицирани  служители  в рамките  на една  и съща  лаборатория  могат  да 
възпроизведат  успешно  резултатите , като използват  конкретен  протокол  в 
различни  моменти . Също  наричана  възпроизводимост  в рамките  на 
лабораторията  (38).  
Отклоняваща  се стойност : отклоняващата  се стойност  е наблюдение , 
което  е маркирано  като различно  от други  стойности  в произволно  
избрана  извадка  от популация . 
Осигуряване  на качеството : управленски  процес , при който  спазването  на 
лабораторни  стандарти  за изпитване , изисквания  и процедури  за водене  на 
дневници , както  и точността  на трансфера  на данни , се оценява  от лица , 
които  са независими  от лицата , изпълняващи  изпитването . 
Надеждност : мярка  за степента , в която  даден  метод  за изпитване  може  да 
се извърши  възпроизводимо  в една  и съща  лаборатория  и между  различни  
лаборатории  в течение  на времето , когато  се използва  един  и същи  
протокол . Надеждността  се оценява , като се изчислява  вътрешно - и межд­  
улабораторната  възпроизводимост  (38).  
Кожна  сенсибилизация : имунологичен  процес , който  възниква , когато  
податлив  индивид  е локално  изложен  на химичен  алерген  с предизвикващо  
действие , който  предизвиква  кожна  имунна  реакция , водеща  до развиването  
на контактна  сенсибилизация . 
Стимулационен  индекс  (SI):  стойност , изчислявана  за оценка  на потенциала  
на дадено  изпитвано  вещество  да предизвиква  кожна  сенсибилизация , която  
представлява  съотношението  на пролиферацията  в третираните  групи  
спрямо  тази в паралелната  третирана  с носителя  контролна  група . 
Изпитвано  вещество  (също  наричано  изпитван  химикал ): всяко  вещество  
или смес , изпитвано (а) чрез използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 744
 
Б.51. КОЖНА  СЕНСИБИЛИЗАЦИЯ : ИЗСЛЕДВАНЕ  НА 
ЛОКАЛНИТЕ  ЛИМФНИ  ВЪЗЛИ : BRDU-ELISA  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Указанията  за изпитването  на химикали  на ОИСР  и методите  за 
изпитване  на ЕС периодично  се преразглеждат  с оглед  на научния  
прогрес , промяната  на регулаторните  нужди  и съображенията , 
свързани  с хуманното  отношение  към животните . Първият  метод  за 
изпитване  (МИ) (Б.42) за определянето  на кожна  сенсибилизация  при 
мишки  — Изследването  на локалните  лимфни  възли  (LLNA, Указание  
за изпитване  429 на ОИСР ) — беше  преработен  (1 и глава  Б.42 от 
настоящото  приложение ). Публикувана  е подробна  информация  за 
валидирането  на LLNA и е направен  преглед  на съответните  научни  
трудове  (2) (3) (4) (5) (6) (7) (8) (9). При изследването  LLNA се 
използва  радиоизотопен  тимидин  или йод за измерване  на прол­  
иферацията  на лимфоцитите  и поради  това изследването  има 
ограничена  употреба , когато  придобиването , използването  или 
обезвреждането  на радиоактивни  вещества  е проблематично . LLNA: 
BrdU-ELISA [ Ензимно  свързан  имуносорбентен  анализ  ELIЅА] е 
нерадиоактивно  изменение  на МИ LLNA, при което  се използва  5- 
бромо -2-деоксиуридин  (BrdU) ( № 59-14-3 съгласно  химичния  
регистър  на Службата  за химични  индекси  [CAS]), който  не е радио­  
маркиран , в базирана  на ELISA система  за изпитване  с цел измерване  
на пролиферацията  на лимфоцитите . LLNA: BrdU-ELISA е валидиран , 
преработен  и препоръчан  от независима  научна  международна  група  за 
партньорска  оценка , тъй като се счита  за полезен  за идентифициране  
на химикалите , които  са кожни  сенсибилизатори , както  и на химик­  
алите , които  не предизвикват  кожна  сенсибилизация , с известни  
ограничения  (10) (11) (12). Този  МИ е предназначен  за оценка  на 
потенциала  на химикалите  (вещества  и смеси ) да предизвикват  кожна  
сенсибилизация  при животни . Глава  Б.6 от настоящото  приложение  и 
Указание  за изпитване  406 на ОИСР  използват  изследвания  върху  
морски  свинчета , по-специално  максимизиращ  тест върху  морски  
свинчета  и тест на Buehler (13). LLNA ( глава  Б.42 от настоящото  
приложение ; Указание  за изпитване  429 на ОИСР ) и двете  му нерадио­  
активни  изменения : LLNA: BrdU-ELISA ( глава  Б.51 от настоящото  
приложение ; Указание  за изпитване  442 Б на ОИСР ) и LLNA: DA 
(глава  Б.50 от настоящото  приложение ; Указание  за изпитване  442 А 
на ОИСР ) — всички  те предоставят  предимство  спрямо  изследванията  
върху  морски  свинчета  в Б.6 и Указание  за изпитване  406 на ОИСР  
(13), що се отнася  до намаляването  и усъвършенстването  на 
използването  на животни . 
2. Подобно  на LLNA, методът  LLNA: BrdU-ELISA проучва  индукц­  
ионната  фаза  при кожна  сенсибилизация  и осигурява  количествени  
данни , подходящи  за оценяване  на зависимостта  доза—отговор . 
Освен  това способността  за откриване  на кожни  сенсибилизатори  без 
да е необходимо  използването  на радиомаркер  за ДНК  елиминира  
потенциалната  възможност  за професионална  експозиция  на радио­  
активност , както  и проблемите , свързани  с обезвреждането  на 
отпадъци . Това  от своя  страна  може  да даде  възможност  за 
повишаване  на използването  на мишки  за откриване  на кожни  сенсиб­  
илизатори , което  още повече  би могло  да намали  използването  на 
морски  свинчета  за изпитване  на потенциала  за кожна  сенсибилизация  
(т.е. Б.6; Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) (13).  
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
3. Използваните  определения  са дадени  в допълнение  1. 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
4. LLNA: BrdU-ELISA е модифициран  метод  LLNA за определяне  на 
химикалите , които  са потенциални  кожни  сенсибилизатори , с 
известни  ограничения . Това  не означава  непременно , че при всички  
случаи  следва  да се използва  LLNA: BrdU-ELISA вместо  LLNA или 
изследванията  върху  морски  свинчета  (т.е. глава  Б.6, Указание  за 
изпитване  406 на ОИСР ) (13), а по-скоро  че изпитването  е равностойно  
и може  да бъде  използвано  като алтернатива , при която  обикновено  
положителните  и отрицателните  резултати  вече не изискват  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 745
 
допълнително  потвърждаване  (10) (11). Лабораторията , провеждаща  
изпитването , следва  да вземе  предвид  цялата  налична  информация  за 
изпитваното  вещество  преди  провеждането  на изпитването . Тази  
информация  ще включва  идентичността  и химичната  структура  на 
изпитваното  вещество ; неговите  физикохимични  свойства ; резултатите  
от всякакви  други  in vitro  или in vivo  токсикологични  изпитвания  на 
изпитваното  вещество ; и токсикологични  данни  за структурно  
свързани  вещества . Тази  информация  следва  да се вземе  предвид , за 
да се определи  дали  LLNA: BrdU-ELISA е подходящо  за изпитваното  
веществото  (с оглед  на несъвместимостта  на ограничен  брой  видове  
химикали  с LLNA: BrdU-ELISA [ вж. точка  5]) и като помощно  
средство  при избора  на доза. 
5. LLNA: BrdU-ELISA е in vivo  метод  и вследствие  на това няма  да 
доведе  до преустановяване  на използването  на животни  при 
оценяването  на алергичната  контактна  сенсибилизираща  активност . 
Той обаче  има потенциала  да намали  използването  на животни  за 
тази цел в сравнение  с изследванията  върху  морски  свинчета  (Б.6; 
Указание  за изпитване  406 на ОИСР ) (13). Освен  това LLNA: 
BrdU-ELISA предлага  съществено  усъвършенстване  на начина , по 
който  животните  се използват  за изпитване  на алергичната  контактна  
сенсибилизация , тъй като за разлика  от глава  Б.6 и Указание  за 
изпитване  406 на ОИСР , LLNA: BrdU-ELISA не изисква  да се 
разкрие  кожна  свръхчувствителност  след  предизвикване . Освен  това 
LLNA: BrdU-ELISA не изисква  употребата  на адювант , както  в 
случаите  на максимизиращ  тест върху  морски  свинчета  (глава  Б.6 от 
настоящото  приложение , 13). По такъв  начин  LLNA: BrdU-ELISA 
намалява  страданието  на животните . Въпреки  предимствата  на 
LLNA: BrdU-ELISA пред  Б.6 и Указание  за изпитване  406 на ОИСР  
(13), съществуват  определени  ограничения , които  могат  да доведат  до 
необходимост  от използване  на Б.6 или на Указание  за изпитване  406 
на ОИСР  (напр . изпитването  на определени  метали , погрешно  полож­  
ителни  резултати  при определени  кожни  дразнители ) [например  някои  
видове  повърхностноактивни  вещества ] (6) (1 и глава  Б.42 от 
настоящото  приложение ) или разтворимостта  на изпитваното  
вещество ). Освен  това химичните  класове  или вещества , съдържащи  
функционални  групи , за които  е доказано , че водят  до възможно  
объркване  (15), могат  да доведат  до необходимост  от използване  на 
изследванията  върху  морски  свинчета  (т.е. Б.6; Указание  за изпитване  
406 на ОИСР  (13). Установените  за LLNA ограничения  (1 и глава  Б.42 
от настоящото  приложение ) се препоръчва  да бъдат  прилагани  и по 
отношение  на LLNA: BrdU-ELISA (10). С изключение  на тези уста­  
новени  ограничения , LLNA: BrdU-ELISA следва  да се прилага  за 
изпитване  на всички  химикали , освен  ако съществуват  свързани  с 
тези химикали  свойства , които  могат  да повлияят  на точността  на 
LLNA: BrdU-ELISA. Освен  това следва  да бъде  обърнато  внимание  
на възможността  за гранични  положителни  резултати , когато  са 
получени  стойности  на стимулационния  индекс  (SI) между  1,6 и 1,9 
(вж. точки  31—32). Това  се основава  на базата  данни  от валидирането , 
състояща  се от 43 вещества , използващи  SI ≥ 1,6 (вж. точка  6), за 
които  изследването  LLNA: BrdU-ELISA правилно  е определило  
всички  32 сенсибилизатора  при LLNA, но неправилно  е определило  
две от 11-те вещества , които  не са сенсибилизатори  при LLNA със 
стойности  на SI между  1,6 и 1,9 (т.е гранично  положителни ) (10). 
При все това, тъй като същият  набор  от данни  беше  използван  за 
определяне  на стойностите  на SI и изчисляване  на прогнозните  
способности  на изпитването , посочените  резултати  могат  да предста­  
вляват  надценяване  на реалните  прогнозни  способности . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
6. Основният  принцип , залегнал  в LLNA: BrdU-ELISA, е, че сенсибилиз­  
аторите  предизвикват  пролиферация  на лимфоцитите  в лимфните  възли , 
дрениращи  мястото  на прилагане  на изпитваното  вещество . Тази  прол­  
иферация  е пропорционална  на дозата  и на действието  на приложения  
алерген  и осигурява  лесен  начин  за получаване  на количествено  
измерване  на сенсибилизацията . Пролиферацията  се измерва  чрез 
сравняване  на средната  пролиферация  във всяка  изпитвана  група  със 
средната  пролиферация  в третираната  с носителя  контролна  група  
(КН). Съотношението  на средната  пролиферация  във всяка  третирана  
група  спрямо  тази в паралелната  третирана  с носителя  контролна  
група , наречено  SI, е определено  и следва  да бъде  ≥ 1,6, преди  да се 
гарантира  по-нататъшната  оценка  на тест-субстанцията  като ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 746
 
потенциален  кожен  сенсибилизатор . Описаните  тук процедури  се 
основават  на измерването  на съдържанието  на BrdU за показване  на 
увеличения  брой  на пролифериращите  клетки  в дрениращите  аурик­  
уларни  (ушни ) лимфни  възли . BrdU е аналогичен  на тимидина  и по 
подобен  начин  е инкорпориран  в ДНК -то на пролифериращите  клетки . 
Инкорпорирането  на BrdU се измерва  чрез ELISA, при който  се 
използва  специфично  за BrdU антитяло , което  също  е маркирано  с 
пероксидаза . Когато  се добави  субстратът , пероксидазата  реагира  със 
субстрата  и произвежда  цветен  продукт , който  количествено  се 
определя  при специфична  абсорбция , като се използва  ридер  за микрот­  
итърна  плака . 
ОПИСАНИЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Избор  на животински  вид 
7. Видът  животни , избран  за това изследване , е мишка . Изследванията  за 
валидиране  на LLNA: BrdU-ELISA бяха  проведени  изключително  с 
мишки  от порода  CBA/JN, която  поради  това се счита  за предпоч­  
итаната  порода  (10) (12). Използват  се млади  възрастни  мишки  от 
женски  пол, които  не са раждали  и не са бременни . В началото  на 
изследването  животните  следва  да бъдат  на възраст  8—12 седмици  и 
отклоненията  в теглото  им следва  да бъдат  минимални  и да не 
превишават  20 % от средното  тегло . Алтернативно  могат  да бъдат  
използвани  животни  от други  породи  и от мъжки  пол, когато  има 
достатъчно  събрани  данни , които  доказват , че не съществува  реакция  
при LLNA: BrdU-ELISA, която  да показва  съществени  различия , обус­  
ловени  от пола  и/или породата . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
8. Мишките  следва  да бъдат  групово  отглеждани  (16), освен  ако е предо­  
ставена  подходяща  научна  обосновка  за индивидуално  отглеждане  на 
мишките . Температурата  в стаята  на опитните  животни  следва  да бъде  
22 ± 3 °C. Въпреки  че относителната  влажност  следва  да бъде  поне  
30 % и е препоръчително  тя да не надвишава  70 % освен  по време  на 
почистване  на стаята , целта  е относителната  влажност  да се поддържа  
в интервала  50—60 %. Осветлението  следва  да бъде  изкуствено , като 
последователността  е 12 часа светлина , 12 часа тъмнина . За храненето  
могат  да се използват  обичайните  лабораторни  диети  с неограничен  
достъп  до вода  за пиене . 
Подготовка  на животните  
9. Животните  се избират  произволно , маркират  се, за да е възможно  
индивидуалното  им идентифициране  (но не и чрез маркиране  на 
ушите  им) и се оставят  в клетките  си поне  пет дни преди  започване  
на дозирането , за да се аклиматизират  към лабораторните  условия . 
Преди  да започне  третирането , всички  животни  се изследват , за да се 
потвърди  отсъствието  на видими  кожни  лезии . 
Приготвяне  на разтворите  за дозиране  
10. Твърдите  химикали  следва  да се разтворят  или суспендират  в разт­  
ворители /носители  и, ако е необходимо , да се разредят  преди  прил­  
агането  им върху  ушите  на мишките . Течните  химикали  могат  да се 
прилагат  в чист  или разреден  вид преди  дозирането . Неразтворимите  
химикали  като тези, които  обикновено  се наблюдават  в медицинските  
изделия , следва  да се подложат  на засилена  екстракция  в подходящ  
разтворител , за да се проявят  всички  екстрахируеми  съставки  за 
изпитване  преди  прилагането  им върху  ушите  на мишките . 
Изпитваните  вещества  следва  да се приготвят  ежедневно , освен  ако 
данните  за устойчивостта  им показват , че те могат  да се съхраняват . 
Проверка  на надеждността  
11. Положителните  контролни  химикали  (ПК) се използват  за доказване  на 
подходящо  провеждане  на изпитването  чрез реагиране  с достатъчна  и 
възпроизводима  чувствителност  като сенсибилизиращо  изпитвано  
вещество , за което  степента  на реакция  е добре  характеризирана . 
Препоръчва  се включването  на паралелна  положителна  контрола  
(ПК), защото  тя доказва  компетентността  на лабораторията  успешно  
да провежда  всяко  изследване  и позволява  оценка  на вътрешно - и 
междулабораторната  възпроизводимост  и сравнимост . Някои  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 747
 
регулаторни  органи  също  изискват  ПК за всяко  изпитване  и поради  
това е препоръчително  потребителите  да се консултират  със съотв­  
етните  органи  преди  провеждането  на LLNA: BrdU-ELISA. В съотв­  
етствие  с това се насърчава  рутинното  използване  на паралелна  полож­  
ителна  контрола , за да се избегне  необходимостта  от изследване  на 
допълнителни  животни  за изпълняването  на тези изисквания , които  
биха  могли  да възникнат  в резултат  на използването  на периодична  
положителна  контрола  (вж. точка  12). ПК следва  да предизвика  полож­  
ителна  LLNA: BrdU-ELISA реакция  при ниво  на експозиция , при което  
се очаква  нарастване  на стимулационния  индекс  SI ≥ 1,6 спрямо  отриц­  
ателната  контролна  група  (ОК). Дозата  за ПК следва  да бъде  избрана  
така, че да не причинява  прекомерно  кожно  дразнене  или системна  
токсичност  и индукцията  да е възпроизводима , но не прекомерна  
(например  SI > 14 би се считало  за прекомерно ). Предпочитаните  
ПК са 25 % хексилканелен  алдехид  (CAS № 101-86-0) и 25 % 
евгенол  (CAS № 97-53-0) в ацетон : зехтин  (4:1, об./об.). Може  да 
има обстоятелства , при които  след  направено  подходящо  обос­  
новаване , могат  да бъдат  използвани  други  положителни  контроли , 
отговарящи  на горепосочените  критерии . 
12. При все че е препоръчително  постоянното  включване  на паралелна  
положителна  контролна  (ПК) група , могат  да съществуват  ситуации , 
при които  периодичното  изпитване  (т.е. на интервали  ≤ 6 месеца ) на 
ПК може  да бъде  подходящо  за лаборатории , които  редовно  провеждат  
LLNA: BrdU-ELISA ( т.е. провеждат  LLNA: BrdU-ELISA с честота  не 
по-малко  от веднъж  месечно ) и които  имат  създадена  база данни  от 
предишни  изпитвания  с ПК, доказваща  способността  на лабораторията  
да получава  възпроизводими  и точни  резултати  с положителните  
контроли . Подходяща  компетентност  за провеждане  на LLNA: 
BrdU-ELISA може  да бъде  успешно  доказана  чрез получаването  на 
последователни  положителни  резултати  с ПК при най-малко  10 
независими  изпитвания , проведени  в рамките  на разумен  период  от 
време  (т.е. по-малко  от една  година ). 
13. Винаги  следва  да се включва  паралелна  ПК група , когато  има 
процедурна  промяна  в LLNA: BrdU-ELISA ( например  промяна  на 
обучения  персонал , промяна  на материалите  и/или реагентите , с 
които  се провежда  методът  за изпитване , промяна  на оборудването , с 
което  се провежда  методът  за изпитване , промяна  в произхода  на 
опитните  животни ), като тези промени  следва  да бъдат  документирани  
в лабораторни  доклади . Следва  да бъде  обърнато  внимание  на възде­  
йствието  на тези промени  върху  годността  на предварително  създа­  
дената  база данни  от предишни  изпитвания  с оглед  да се определи  
необходимостта  от създаване  на нова  база данни  от предишни  
изпитвания  за документиране  на последователността  на резултатите  с 
ПК. 
14. Изследователите  следва  да са наясно , че решението  за периодично  
провеждане  на изпитване  с положителна  контрола  вместо  паралелното  
му провеждане  има последици  върху  годността  и приемливостта  на отриц­  
ателните  резултати  от изпитването , получени  без паралелна  положителна  
контрола  по време  на интервала  между  всяко  периодично  изпитване  с 
положителна  контрола . Например , ако се получи  фалшиво  отрицателен  
резултат  при периодичното  изпитване  с положителна  контрола , отрицат­  
елните  резултати  за изпитваното  вещество , получени  по време  на 
интервала  между  последното  приемливо  периодично  изпитване  с полож­  
ителна  контрола  и неприемливото  периодично  изпитване  с положителна  
контрола , могат  да бъдат  поставени  под съмнение . Изводите  относно  тези 
резултати  следва  да бъдат  внимателно  взети  предвид  при определяне  дали  
да се включват  паралелни  ПК или само  да се провеждат  периодични  ПК. 
Следва  да се обърне  внимание  и на използването  на по-малко  животни  в 
паралелната  ПК група , когато  това е научно  обосновано  и ако 
лабораторията  докаже , въз основа  на конкретните  за лабораторията  
данни  от предишни  изпитвания , че могат  да бъдат  използвани  по-малко  
мишки  (17).  
15. Въпреки  че положителната  контрола  следва  да бъде  изпитвана  в 
носителя , за който  е известно , че при прилагането  му се получава  
постоянна  реакция  (напр . ацетон : зехтин ; 4:1, об./об.), може  да има 
определени  регулаторни  ситуации , при които  също  така ще бъде  необ­  
ходимо  провеждането  на изпитване  в нестандартен  носител  (клинично / 
химично  отговаряща  формулация ) (18). Ако паралелната  положителна  
контрола  се изпитва  в различен  носител  от изпитваното  вещество , 
тогава  следва  да бъде  включена  отделна  третирана  с носителя  
контролна  група  за паралелната  положителна  контрола . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 748
 
16. В случаи , при които  се оценяват  изпитвани  вещества  от определен  
химичен  клас или спектър  от реакции , еталонните  вещества  също  
могат  да бъдат  от полза , за да се докаже , че методът  за изпитване  
функционира  правилно  по отношение  на откриването  на потенциала  
за кожна  сенсибилизация  на тези видове  изпитвани  вещества . 
Подходящите  еталонни  вещества  следва  да притежават  следните  
свойства : 
— структурно  и функционално  сходство  с класа  на изпитваното  
вещество ; 
— известни  физични /химични  характеристики ; 
— подкрепящи  данни  от LLNA: BrdU-ELISA;  
— подкрепящи  данни  от други  животински  модели  и/или от хора . 
ПРОЦЕДУРА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Брой  на животните  и нива  на дозите  
17. Използват  се минимум  четири  животни  за подложена  на дадена  доза 
група , при минимум  три концентрации  на изпитваното  вещество , плюс  
паралелна  отрицателна  контролна  група  (ОК), третирана  само  с 
носителя  на изпитваното  вещество , както  и ПК група  (паралелна  или 
скорошна  въз основа  на лабораторната  политика , като се вземат  
предвид  точки  11—15). Следва  да се обмисли  изпитването  на 
множество  дози  на положителната  контрола , особено  когато  не се 
провеждат  редовни  изпитвания  на ПК. Животните  от контролните  
групи  следва  да бъдат  отглеждани  и третирани  по начин , идентичен  
с този, на животните  от третираните  групи , с изключение  на това, че 
липсва  третиране  с изпитваното  вещество . 
18. Изборът  на доза и носител  следва  да бъде  основан  на препоръките , 
посочени  в библиографски  бележки  2 и 19. Последователните  дози  
обикновено  се избират  от подходяща  поредица  от концентрации  като 
например  100 %, 50 %, 25 %, 10 %, 5 %, 2,5 %, 1 %, 0,5 % и т.н. 
Изборът  на използваната  поредица  от концентрации  следва  да бъде  
придружен  от подходяща  научна  обосновка . Цялата  съществуваща  
токсикологична  информация  (напр . остра  токсичност  и кожно  
дразнене ) и информацията  за структурните  и физикохимичните  
свойства  на представляващото  интерес  изпитвано  вещество  (и/или 
структурно  свързаните  вещества ) следва  да бъде  взета  предвид  в 
случай  на наличност  при избора  на трите  последователни  конце­  
нтрации , така че най-високата  концентрация  да увеличава  в макс­  
имална  степен  експозицията , като същевременно  се избягва  системната  
токсичност  и/или прекомерното  локално  кожно  дразнене  (19) (20) и 
глава  Б.4 от настоящото  приложение ). При липсата  на такава  
информация  може  да е необходимо  първоначално  предварително  
скринингово  изпитване  (вж. точки  21—24).  
19. Носителят  не следва  да пречи  или да оказва  влияние  на резултата  от 
изпитването  и следва  да бъде  избран  въз основа  на способността  му 
максимално  да повишава  разтворимостта , за да се получи  най-високата  
постижима  концентрация , като същевременно  се приготвя  подходящ  
разтвор /суспензия  за прилагане  на изпитваното  вещество . Препоръчит­  
елните  носители  са ацетон : зехтин  (4:1, об./об.), N,N-димет­  
илформамид , метилетилкетон , пропилен  гликол  и диметилсулфоксид  
(6), но могат  да бъдат  използвани  и други , при условие  че се 
предостави  достатъчна  научна  обосновка . При определени  ситуации  
може  да бъде  необходимо  да се използват  клинично  обусловени  разт­  
ворители  или търговска  формулация , в която  изпитваното  вещество  се 
маркира  като допълнителна  контрола . Следва  да се обърне  особено  
внимание , за да се гарантира , че хидрофилните  изпитвани  вещества  
се инкорпорират  в среда  от носители , която  навлажнява  кожата  и не 
се изпарява  веднага  чрез инкорпорирането  на подходящи  солюб­  
илизатори  (напр . 1 % плуроник  — Pluronic® L92). Поради  тази 
причина  носителите  на изцяло  водна  основа  трябва  да бъдат  избягвани . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 749
 
20. Обработката  на лимфни  възли  от отделни  мишки  дава възможност  за 
оценка  на вариабилността  между  животните  и за статистическо  
сравнение  на разликата  между  изпитваното  вещество  и измерванията  
в третираната  с носителя  контролна  група  (вж. точка  33). В 
допълнение  към това оценяването  на възможността  за намаляване  на 
броя  на мишките  в ПК група  е възможно  единствено  когато  се събират  
индивидуални  данни  за отделните  животни  (17). Освен  това някои  
регулаторни  органи  изискват  събирането  на индивидуални  данни  за 
отделните  животни . Редовното  събиране  на индивидуални  данни  за 
отделните  животни  предоставя  предимство  по отношение  на 
хуманното  отношение  към животните , като се избягва  дублирането  
на изпитвания , което  би било  необходимо , ако резултатите  за 
изпитваното  вещество , които  първоначално  са събрани  по един  
начин  (напр . чрез сборни  данни  за животните ), по-късно  бъдат  разг­  
ледани  от регулаторни  органи  с други  изисквания  (напр . за събиране  
на индивидуални  данни  за отделните  животни ). 
Предварително  скринингово  изпитване  
21. При липсата  на информация  за определянето  на най-високата  доза за 
изпитване  (вж. точка  18) следва  да се извърши  предварително  
скринингово  изпитване , за да се определи  подходящото  ниво  на 
дозата  за изпитване  при LLNA: BrdU-ELISA. Целта  на предварит­  
елното  скринингово  изпитване  е да предостави  насоки  за избора  на 
максималното  ниво  на дозата , което  да бъде  използвано  в основното  
изпитване  LLNA: BrdU-ELISA, когато  не е налична  информация  за 
концентрацията , причиняваща  системна  токсичност  (вж. точка  24) 
и/или прекомерно  локално  кожно  дразнене  (вж. точка  23). Изпитваното  
максимално  ниво  на дозата  следва  да бъде  100 % от изпитваното  
вещество  за течности  или максималната  възможна  концентрация  за 
твърди  вещества  или суспензии . 
22. Предварителното  скринингово  изпитване  се провежда  при условия , 
идентични  на тези в основното  изпитване  LLNA: BrdU-ELISA, с 
изключение  на това, че не се оценява  пролиферацията  на лимфните  
възли  и могат  да бъдат  използвани  по-малко  животни  за подложена  на 
дадена  доза група . Предлага  се използването  на едно  или две животни  
за подложена  на дадена  доза група . Всички  мишки  се наблюдават  
ежедневно  за всякакви  клинични  признаци  за систематична  токсичност  
или локално  дразнене  на мястото  на прилагане . Телесните  тегла  се 
записват  преди  изпитването  и преди  завършването  му (ден 6). И 
двете  уши на всяка  мишка  се наблюдават  за еритема  и резултатите  
се отчитат , като се използва  таблица  1 (20) и глава  Б.4 от настоящото  
приложение ). Измерванията  на дебелината  на ушите  се правят , като се 
използва  измервателен  уред  за дебелината  (напр . цифров  микрометър  
или измервателен  уред  за дебелината  Peacock Dial) в ден 1 (преди  
дозирането ), ден 3 (приблизително  48 часа след  първата  доза) и ден 
6. Освен  това в ден 6 дебелината  на ушите  би могла  да бъде  
определена  чрез продупчване  на ушите  и определяне  на теглото  на 
взетите  продупчени  части , което  следва  да се извърши  след  като 
животните  бъдат  умъртвени  по хуманен  начин . Показател  за прек­  
омерното  локално  дразнене  е балова  оценка  на еритемата  ≥ 3 и/или 
дебелина  на ушите  в размер  на ≥ 25 % в който  и било  от дните  с 
измервания  (21) (22). Най-високата  доза, избрана  за основното  
изпитване  LLNA: BrdU-ELISA, ще бъде  следващата  по-ниска  доза от 
поредицата  от концентрации  в предварителния  скрининг  (вж. точка  
18), която  не причинява  системна  токсичност  и/или прекомерно  
локално  кожно  дразнене . 
Таблица  1 
Оценки  на еритемата  
Наблюдение  Балова  оценка  
Отсъствие  на еритема  0 
Много  слаба  еритема  (едва забележима ) 1 
Добре  изразена  еритема  2  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 750
 
Наблюдение  Балова  оценка  
Умерена  до тежка  еритема  3 
Тежка  еритема  (силно  зачервяване  — с цвят  на цвекло ) до 
образуване  на есхара , което  не позволява  да се отчете  
баловата  оценка  на еритемата  4 
23. В допълнение  към увеличаване  на дебелината  на ушите  с 25 % (21) 
(22), за идентифициране  на дразнители  при LLNA също  така се 
използва  статистически  значимо  увеличаване  на дебелината  на ушите  
при третираните  мишки  в сравнение  с контролните  мишки  (22) (23) 
(24) (25) (26) (27) (28). Въпреки  това, макар  че могат  да възникнат  
статистически  значими  увеличения , когато  дебелината  на ушите  е по- 
малка  от 25 %, те не са конкретно  свързани  с прекомерното  дразнене  
(25) (26) (27) (28) (29).  
24. Следните  клинични  наблюдения  могат  да показват  систематична  токс­  
ичност  (30), когато  се използват  като част от интегрирана  оценка , и 
поради  това могат  да показват  максималното  ниво  на дозата , което  да се 
използва  в основното  LLNA: BrdU-ELISA: промени  във функционирането  
на нервната  система  (напр . пилоерекция , атаксия , тремори  и конвулсии ); 
промени  в поведението  (напр . агресивност , промяна  в хигиената  на 
тялото , изразена  промяна  в нивото  на активност ); промени  в начина  на 
дишане  (т.е. промени  в честотата  и интензивността  на дишането  като 
диспнея , задъханост  и хрипове ) и промени  в консумацията  на храна  и 
вода . Освен  това в оценката  следва  да бъдат  взети  предвид  признаци  на 
летаргия  и/или липса  на реакция  и всякакви  клинични  признаци  на нещо  
повече  от лека или момента  болка  и страдание  или намаляване  на 
телесното  тегло  > 5 % от ден 1 до ден 6, както  и смъртността . 
Умиращите  животни , както  и животните , които  показват  признаци  на 
силна  болка  или страдание , следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  
начин  (31).  
Експериментален  график  на основното  изпитване  
25. Експерименталният  график  на изпитването  е, както  следва : 
— Ден 1: индивидуално  се идентифицира  и записва  теглото  на всяко  
животно  и всяко  клинично  наблюдение . Прилага  се 25 μL 
подходящо  разреден  разтвор  на изпитваното  вещество , както  и 
самостоятелно  носителят  или положителната  контрола  (паралелна  
или скорошна  въз основа  на лабораторната  политика , като се 
вземат  предвид  точки  11—15), в горната  част на всяко  ухо. 
— Дни 2 и 3: повтаря  се процедурата  по прилагане , извършена  в ден 1. 
— Ден 4: няма  третиране . 
— Ден 5: инжектира  се 0,5 mL (5 mg/ мишка ) разтвор  на BrdU 
(10 mg/mL) вътрешно  перитонеално . 
— Ден 6: записва  се теглото  на всяко  животно  и всяко  клинично  набл­  
юдение . Приблизително  24 часа (24 h) след инжектирането  на BrdU 
животните  се умъртвяват  по хуманен  начин . Дрениращите  аурик­  
уларни  (ушни ) лимфни  възли  от всяко  ухо на мишката  се отрязват  и 
обработват  отделно  в буферен  физиологичен  разтвор  с фосфат  (PBS) 
за всяко  животно . Подробности  и диаграми  за идентифицирането  и 
дисекцията  на лимфните  възлите  могат  да бъдат  намерени  в 
позоваване  (17). За допълнително  наблюдение  на локалната  кожна  
реакция  при основното  изпитване  в протокола  от изпитването  могат  
да бъдат  включени  допълнителни  параметри  като оценяване  на 
ушната  еритема  или измервания  на дебелината  на ушите  (получени  
или чрез използването  на измервателен  уред  за дебелината , или чрез 
продупчване  на ушите  и определяне  на теглото  на взетите  продупчени  
части  при аутопсията ). ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 751
 
Приготвяне  на клетъчни  суспензии  
26. Клетъчна  суспензия  от единични  клетки  се приготвя  от клетки  от 
лимфните  възли  (КЛВ ), отрязани  двустранно  от всяка  мишка , чрез 
леко  механично  разпръсване  през 200-микронови  отвори  на мрежа  от 
неръждаема  стомана  или чрез друга  приемлива  техника  за получаване  
на клетъчна  суспензия  от единични  клетки  (напр . използване  на 
пластмасово  чукало  за еднократна  употреба  за раздробяване  на 
лимфните  възли  с последващото  им преминаване  през найлонова  
мрежа  със 70-микронови  отвори ). Процедурата  за приготвяне  на 
суспензията  от КЛВ  е от критична  важност  в това изпитване  и 
поради  това всеки  оператор  следва  да усвои  предварително  уменията  
за това. Освен  това лимфните  възли  на животните  в отрицателната  
контролна  група  са малки , поради  което  е важно  да действате  вним­  
ателно , за да избегнете  каквито  и да било  изкуствени  ефекти  върху  
стойностите  на SI. Във всеки  случай , целевият  обем  на суспензията , 
приготвена  от КЛВ , следва  да бъде  приспособен  към определен  
оптимизиран  обем  (прибл . 15 mL). Оптимизираният  обем  се основава  
на постигане  на средната  абсорбция  на отрицателната  контролна  група  
в интервала  0,1—0,2.  
Определяне  на клетъчната  пролиферация  (измерване  на съдържанието  
на BrdU в ДНК  на лимфоцитите ) 
27. BrdU се измерва  с метода  ELISA чрез използване  на промишлен  
комплект  (напр . Roche Applied Science, Mannheim, Germany, 
каталожен  номер  11 647 229 001). Накратко , 100 μL от суспензията , 
приготвена  от клетки  от лимфните  възли  (КЛВ ), се добавя  трикратно  в 
резервоарите  на микроплата  с плоско  дъно . След  фиксиране  и 
денатурация  на КЛВ , във всеки  резервоар  се добавя  антитяло  анти - 
BrdU и се дава възможност  за реакция . Впоследствие  антитялото  
анти -BrdU се премахва  чрез промиване  и след  това се добавя  разтвор  
субстрат  и се позволява  образуване  на хромоген . След  това се измерва  
абсорбция  на 370 nm с референтна  дължина  на вълната  от 492 nm. Във 
всички  случаи  условията  за провеждане  на изпитването  следва  да 
бъдат  оптимизирани  (вж. точка  26).  
НАБЛЮДЕНИЯ  
Клинични  наблюдения  
28. Всяка  мишка  следва  да бъде  внимателно  наблюдавана  поне  веднъж  
дневно  за всякакви  клинични  признаци  за локално  дразнене  на 
мястото  на прилагане  или за систематична  токсичност . Всички  набл­  
юдения  систематично  се записват , като се водят  дневници  за всяка  
мишка . Плановете  за наблюдение  следва  да включват  критерии  за 
бързото  идентифициране  на мишките , които  показват  признаци  на 
системна  токсичност , прекомерно  локално  кожно  дразнене  или 
корозивност  на кожата , за да бъдат  подложени  на евтаназия  (31).  
Телесни  тегла  
29. Както  е посочено  в точка  25, индивидуалните  телесни  тегла  на 
животните  следва  да бъдат  измерени  в началото  на изпитването  и 
при планираното  умъртвяване  на животните  по хуманен  начин . 
ИЗЧИСЛЯВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
30. Резултатите  за всяка  третирана  група  се изразяват  като среден  SI. SI се 
получава  чрез разделяне  на средната  стойност  на индекса  на маркиране  
на BrdU/мишка  във всяка  група , изследвана  с изпитваното  вещество , и 
в положителната  контролна  група , на средната  стойност  на индекса  на 
маркиране  на BrdU за третираната  с разтворителя /носителя  контролна  
група . Средната  стойност  на SI за контролите , третирани  с носителя , е 
единица . 
Индексът  на маркиране  на BrdU се определя  като: 
Индекс  на маркиране  на BrdU = (ABS  em – ABS празна  проба  em ) – 
(ABS  ref – ABS празна  проба  ref ) 
където  em = дължина  на вълната  на емисията ; и ref = референтна  
дължина  на вълната . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 752
 
31. При процеса  на вземане  на решение  даден  резултат  се счита  за полож­  
ителен , когато  SI ≥ 1,6 (10). При все това силата  на зависимостта  
доза—отговор  статистическата  значимост  и съгласуваността  на разт­  
ворителя /носителя  и ПК реакциите  също  могат  да бъдат  използвани  
при определянето  дали  даден  граничен  резултат  (т.е. стойност  на SI 
между  1,6 и 1,9) да бъде  обявен  за положителен  (3) (6) (32).  
32. При гранична  положителна  реакция  със стойност  на SI между  1,6 и 1,9 
ползвателите  могат  да вземат  предвид  допълнителна  информация  като 
например  зависимостта  доза—отговор , доказателство  за систематична  
токсичност  или прекомерно  дразнене  и, където  е подходящо , статист­  
ическата  значимост  заедно  със стойностите  на SI, с цел потвърждаване , 
че тези резултати  са положителни  (10). Следва  да бъде  обърнато  
внимание  на различните  свойства  на изпитваното  вещество , включ­  
ително  дали  то има структурна  връзка  с познати  кожни  сенсибилиз­  
атори , дали  причинява  прекомерно  кожно  дразнене  при мишките , 
както  и какво  е естеството  на наблюдаваната  зависимост  доза—от­ 
говор . Тези  и други  съображения  подробно  се обсъждат  на друго  
място  (4). 
33. Събирането  на данни  на нивото  на отделните  мишки  ще даде  
възможност  за статистически  анализ  на наличието  и степента  на завис­  
имостта  доза—отговор  в данните . Всяка  статистическа  оценка  би 
могла  да включва  оценка  на зависимостта  доза—отговор , както  и 
подходящо  направени  сравнения  между  изпитваните  групи  (напр . 
сравнения  по двойки  на дозираните  групи  с паралелната  третирана  с 
разтворителя /носителя  контролна  група ). Статистическите  анализи  
могат  да включват  например  линейна  регресия  или изпитването  на 
William за оценка  на тенденциите  в зависимостта  доза—отговор  и 
изпитването  на Dunnett за сравнения  по двойки . При избора  на 
подходящ  метод  за статистически  анализ , изследователят  следва  да 
обърне  внимание  на възможни  различия  в дисперсиите  и други  
свързани  с тях проблеми , които  могат  да наложат  трансформация  на 
данните  или провеждане  на статистически  анализ  без параметри . Във 
всеки  случай  на изследователя  може  да му се наложи  да извърши  
изчисления  за SI и статистически  анализи  със и без определени  
точки  с данни  (понякога  наричани  „отклоняващи  се стойности “). 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
34. Данните  следва  да бъдат  обобщени  в табличен  вид, като се посочват  
индивидуалните  стойности  на индекса  на маркиране  на BrdU за 
отделните  животни , средната  за групата  стойност  на индекса  на 
маркиране  на BrdU/животно , свързаният  с нея граница  на отклонение  
(напр . SD, SEM) и средният  SI за всяка  подложена  на дадена  доза 
група  в сравнение  с паралелната  третирана  с разтворителя /носителя  
контролна  група . 
Протокол  от изпитването  
35. Протоколът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитвани  и контролни  химикали : 
— идентификационни  данни  (напр . CAS и EC номера , ако са налични ; 
източник , чистота , известни  примеси , номер  на партидата ); 
— физична  форма  и физикохимични  свойства  (напр . летливост , усто­  
йчивост , разтворимост ); 
— ако е смес , състав  и относително  съотношение  в проценти  на 
елементите . 
Разтворител /носител : 
— идентификационни  данни  (чистота ; концентрация , където  е 
подходящо ; използвано  количество ); 
— обосновка  за избор a на носител . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 753
 
Опитни  животни : 
— произход  на мишките  от порода  CBA;  
— микробиологичен  статус  на животните , ако е известен ; 
— брой  и възраст  на животните ; 
— произход  на животните , условия  на отглеждане , диета  и т.н. 
Условия  на изпитване : 
— източник , номер  на партидата  и данни , свързани  с осигуряването  на 
качеството /контрола  на качеството  на производителя  (чувствит­  
елност  и специфичност  на антитялото  и границата  на откриваемост ) 
за комплекта  за ELISA;  
— подробна  информация  за приготвянето  и прилагането  на 
изпитваното  вещество ; 
— обосновка  за избора  на доза (включително  резултатите  от 
предварителното  скринингово  изпитване , ако е проведено ); 
— използвани  концентрации  на изпитваното  вещество  и носителя  и 
общо  количество  на приложеното  изпитвано  вещество ; 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  вид/източник  на диетата , водоизточник ); 
— подробна  информация  за графиците  на третиране  и вземане  на 
проби ; 
— методи  за измерване  на токсичността ; 
— критерии  за считане  на изпитванията  за положителни  или отриц­  
ателни ; 
— подробна  информация  за всякакви  отклонения  от протокола  и 
обяснение  за това как отклонението  влияе  на планирането  на 
изпитването  и на резултатите  от него . 
Проверка  на надеждността : 
— обобщение  на резултатите  от последната  проверка  на 
надеждността , включително  информация  за използваните  
изпитвано  вещество , концентрация  и носител ; 
— данни  за паралелни  и/или предишни  положителни  контроли  и 
паралелни  отрицателни  контроли  (разтворител /носител ) за 
лабораторията , провеждаща  изпитването ; 
— ако не е била  включена  паралелна  положителна  контрола , се 
посочва  датата  и лабораторният  доклад  на най-скорошното  
периодично  изпитване  с положителна  контрола  и доклад , в който  
подробно  се представят  данните  от предишни  изпитвания  с полож­  
ителни  контроли  на лабораторията  и който  обосновава  защо  не се 
провежда  паралелна  положителна  контрола . 
Резултати : 
— индивидуални  тегла  на мишките  в началото  на дозирането  и при 
планираното  им умъртвяване  по хуманен  начин ; както  и средната  
стойност  на границата  на отклонение  (напр . SD, SEM) за всяка  
третирана  група ; 
— признаци  на токсичност  и време  на настъпването  им, включително  
кожно  дразнене  на мястото  на прилагане , ако има такова , за всяко  
животно ; 
— таблица  на индексите  на маркиране  на BrdU и стойностите  на SI за 
отделните  мишки  за всяка  третирана  група ; 
— средната  стойност  и съответната  граница  на отклонение  (напр . SD, 
SEM) за индекса  на маркиране  на BrdU/мишка  за всяка  третирана  
група  и резултатите  от анализа  на отклоняващите  се стойности  за 
всяка  третирана  група ; ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 754
 
— изчисленият  SI и подходяща  мярка  за вариабилността , която  отчита  
вариабилността  между  животните  както  в групата  с изпитваното  
вещество , така и в контролната  група ; 
— зависимостта  доза—отговор ; 
— статистически  анализи , където  е подходящо . 
Обсъждане  на резултатите : 
— кратък  коментар  на резултатите , анализ  на зависимостта  
доза—отговор  и статистически  анализ , където  е подходящо , със 
заключение  дали  изпитваното  вещество  следва  да се счита  за 
кожен  сенсибилизатор . 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD (2010), Skin Sensitisation: Local Lymph Node Assay, Test 
Guideline № 429, Guidelines for the Testing of Chemicals, OECD, Paris. 
На разположение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(2) Chamberlain, M. and Basketter, D.A. (1996), The local lymph node assay: 
status of validation. Food Chem. Toxicol., 34, 999-1002.  
(3) Basketter, D.A., Gerberick, G.F., Kimber, I. and Loveless, S.E. (1996), The 
local lymph node assay: A viable alternative to currently accepted skin sensitisation tests. Food Chem. Toxicol., 34, 985-997.
 
(4) Basketter, D.A., Gerberick, G.F. and Kimber, I. (1998), Strategies for iden ­
tifying false positive responses in predictive sensitisation tests. Food Chem. Toxicol., 36, 327-33.
 
(5) Van Och, F.M.M., Slob, W., De Jong, W.H., Vandebriel, R.J. and Van 
Loveren, H. (2000), A quantitative method for assessing the sensitising 
potency of low molecular weight chemicals using a local lymph node assay: employment of a regression method that includes determination of uncertainty margins. Toxicol., 146, 49-59.
 
(6) ICCVAM (1999), The murine local lymph node Assay: A test method for 
assessing the allergic contact dermatitis potential of chemicals/compounds: 
The results of an independent peer review evaluation coordinated by the 
Interagency Coordinating Committee on the Validation of Alternative Methods (ICCVAM) and the National Toxicology Program Center for the Evaluation of Alternative Toxicological Methods (NICETAM). NIH Publi ­
cation No: 99-4494. Research Triangle Park, N.C. На разположение  на 
адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/docs/immunotox_docs/llna/llnarep.pdf]
 
(7) Dean, J.H., Twerdok, L.E., Tice, R.R., Sailstad, D.M., Hattan, D.G., Stokes, 
W.S. (2001), ICCVAM evaluation of the murine local lymph node assay: II. Conclusions and recommendations of an independent scientific peer review 
panel. Reg. Toxicol. Pharmacol., 34(3), 258-273.
 
(8) Haneke, K.E., Tice, R.R., Carson, B.L., Margolin, B.H., Stokes, W.S. 
(2001), ICCVAM evaluation of the murine local lymph node assay: III. 
Data analyses completed by the national toxicology program interagency center for the evaluation of alternative toxicological methods. Reg. Toxicol. Pharmacol., 34(3), 274-286.
 
(9) Sailstad, D.M., Hattan, D., Hill, R.N., Stokes, W.S. (2001), ICCVAM 
evaluation of the murine local lymph node assay: I. The ICCVAM 
review process. Reg. Toxicol. Pharmacol., 34(3), 249-257.  
(10) ICCVAM (2010), ICCVAM Test Method Evaluation Report. Nonradio ­
active local lymph node assay: BrdU-ELISA Test Method Protocol (LLNA: BrdU-ELISA). NIH Publication № 10-7552A/B. Research 
Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences. 
На разположение  на адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/immuno ­
tox/llna-ELISA/TMER.htm]
 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 755
 
(11) ICCVAM (2009), Independent Scientific Peer Review Panel Report: Updated 
validation status of new versions and applications of the murine local lymph 
node assay: a test method for assessing the allergic contact dermatitis potential of chemicals and products. Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : [http://iccvam. 
niehs.nih.gov/docs/immunotox_docs/LLNAPRPRept2009.pdf]
 
(12) Takeyoshi, M., Iida, K., Shiraishi, K. and Hoshuyama, S. (2005), Novel 
approach for classifying chemicals according to skin sensitising potency by non-radioisotopic modification of the local lymph node assay. J. Appl. Toxicol., 25, 129-134.
 
(13) OECD (1992), Skin Sensitisation, Test Guideline № 406, Guidelines for 
Testing of Chemicals, OECD, Paris. На разположение  на адрес : 
[http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(14) Kreiling, R., Hollnagel, H.M., Hareng, L., Eigler, L., Lee, M.S., Griem, P., 
Dreessen, B., Kleber, M., Albrecht, A., Garcia, C. and Wendel, A. (2008), Comparison of the skin sensitising potential of unsaturated compounds as 
assessed by the murine local lymph node assay (LLNA) and the guinea pig 
maximization test (GPMT). Food Chem. Toxicol., 46, 1896-1904.
 
(15) Basketter, D., Ball, N., Cagen, S., Carrilo, J.C., Certa, H., Eigler, D., 
Garcia, C., Esch, H., Graham, C., Haux, C., Kreiling, R. and Mehling, A. (2009), Application of a weight of evidence approach to assessing 
discordant sensitisation datasets: implications for REACH. Reg. Toxicol. 
Pharmacol., 55, 90-96.
 
(16) ILAR (1996), Institute of Laboratory Animal Research (ILAR) Guide for 
the Care and Use of Laboratory Animals. 7th ed. Washington, DC: National Academies Press.
 
(17) ICCVAM (2009), Recommended Performance Standards: Murine Local 
Lymph Node Assay. NIH Publication Number 09-7357. Research 
Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес :[http://iccvam.niehs.nih.gov/docs/ 
immunotox_docs/llna-ps/LLNAPerfStds.pdf]
 
(18) McGarry, H.F. (2007), The murine local lymph node assay: regulatory and 
potency considerations under REACH. Toxicol., 238, 71-89.  
(19) Kimber, I., Dearman, R.J., Scholes E.W. and Basketter, D.A. (1994), The 
local lymph node assay: developments and applications. Toxicol., 93, 13-31.
 
(20) OECD (2002), Acute Dermal Irritation/Corrosion, Test Guideline № 404, 
Guidelines for Testing of Chemicals, OECD, Paris. На разположение  на 
адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(21) Reeder, M.K., Broomhead, Y.L., DiDonato, L. and DeGeorge, G.L. (2007), 
Use of an enhanced local lymph node assay to correctly classify irritants and false positive substances. Toxicologist, 96, 235.
 
(22) ICCVAM (2009), Nonradioactive Murine Local Lymph Node Assay: Flow 
Cytometry Test Method Protocol (LLNA: BrdU-FC) Revised Draft 
Background Review Document. Research Triangle Park, NC: National 
Institute of Environmental Health Sciences. На разположение  на адрес : 
[http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/immunotox/fcLLNA/BRDcomplete.pdf  
(23) Hayes, B.B., Gerber, P.C., Griffey, S.S. and Meade, B.J. (1998), Contact 
hypersensitivity to dicyclohexylcarbodiimide and diisopropylcarbodiimide 
in female B6C3F1 mice. Drug Chem. Toxicol., 21, 195-206.  
(24) Homey, B., von Schilling, C., Blumel, J., Schuppe, H.C., Ruzicka, T., Ahr, 
H.J., Lehmann, P. and Vohr, V.W. (1998), An integrated model for the differentiation of chemical-induced allergic and irritant skin reactions. Toxicol. Appl. Pharmacol., 153, 83-94.
 
(25) Woolhiser, M.R., Hayes, B.B. and Meade, B.J. (1998), A combined murine 
local lymph node and irritancy assay to predict sensitisation and irritancy 
potential of chemicals. Toxicol. Meth., 8, 245-256.  ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 756
 
(26) Hayes, B.B. and Meade, B.J. (1999), Contact sensitivity to selected acrylate 
compounds in B6C3F1 mice: relative potency, cross reactivity, and 
comparison of test methods. Drug. Chem. Toxicol., 22, 491-506.  
(27) Ehling, G., Hecht, M., Heusener, A., Huesler, J., Gamer, A.O., van 
Loveren, H., Maurer, T., Riecke, K., Ullmann, L., Ulrich, P., Vandebriel, 
R. and Vohr, H.W. (2005), A European inter- laboratory validation of 
alternative endpoints of the murine local lymph node assay: first round. Toxicol., 212, 60-68.
 
(28) Vohr, H.W. and Ahr, H.J. (2005), The local lymph node assay being too 
sensitive? Arch. Toxicol., 79, 721-728.  
(29) Patterson, R.M., Noga, E. and Germolec D. (2007), Lack of evidence for 
contact sensitisation by Pfiesteria extract. Environ. Health Perspect., 115, 1023-1028.
 
(30) ICCVAM (2009), Report on the ICCVAM-NICEATM/ECVAM/JaCVAM 
Scientific Workshop on Acute Chemical Safety Testing: Advancing  In Vitro  
Approaches and Humane Endpoints for Systemic Toxicity Evaluations. Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health 
Sciences. На разположение  на адрес : [http://iccvam.niehs.nih.gov/ 
methods/acutetox/Tox_workshop.htm].
 
(31) OECD (2000), Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used 
in Safety Evaluation, Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 19, ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, Paris. 
На разположение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]
 
(32) Kimber, I., Hilton, J., Dearman, R.J., Gerberick, G.F., Ryan, C.A., 
Basketter, D.A., Lea, L., House, R.V., Ladies, G.S., Loveless, S.E. and Hastings, K.L. (1998), Assessment of the skin sensitisation potential of topical medicaments using the local lymph node assay: An interlaboratory 
exercise. J. Toxicol. Environ.l Health, 53, 563-79.
 
(33) OECD (2005), Guidance Document on the Validation and International 
Acceptance of New or Updated Test Methods for Hazard Assessment, Environment, Health and Safety Monograph Series on Testing and 
Assessment № 34, ENV/JM/MONO(2005)14, OECD, Paris. На разп­  
оложение  на адрес : [http://www.oecd.org/env/testguidelines]
 ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 757
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Точност : степента  на близост  на съвпадение  на резултатите  от метода  за 
изпитване  и приетите  референтни  стойности . Това  е мярка  за ефективността  
на метода  за изпитване  и един  от аспектите  на неговата  приложимост . 
Терминът  често  се използва  взаимозаменяемо  с термина  „съвпадение “, за 
да се обозначи  делът  на верните  резултати  на даден  метод  за изпитване  (33).  
Еталонно  вещество : вещество , което  предизвиква  или не предизвиква  
сенсибилизация , използвано  като норма  за сравнение  с изпитваното  
вещество . Едно  еталонно  вещество  следва  да притежава  следните  
свойства : i) постоянен  и надежден  източник ; ii) структурно  и функционално  
сходство  с класа  на изпитваните  вещества ; iii) известни  физикохимични  
характеристики ; iv) потвърждаващи  данни  за известни  въздействия ; и v) 
известна  ефективност  за постигане  на желаната  реакция . 
Вещество  с фалшиво  отрицателен  резултат : изпитвано  вещество , 
неправилно  определено  като даващо  отрицателен  резултат  или неактивно  
при даден  метод  за изпитване , докато  в действителност  то дава полож­  
ителен  резултат  или е активно  (33).  
Вещество  с фалшиво  положителен  резултат : изпитвано  вещество , 
неправилно  определено  като даващо  положителен  резултат  или активно  
при дадено  изпитване , докато  в действителност  то дава отрицателен  
резултат  или е неактивно  (33).  
Опасност : потенциалът  за получаване  на неблагоприятен  за здравето  или 
екологичен  ефект . Неблагоприятният  ефект  се проявява  само  при дост­  
атъчно  голяма  степен  на експозиция . 
Междулабораторна  възпроизводимост : мярка  за степента , в която  разл­  
ичните  квалифицирани  лаборатории , които  използват  един  и същи  
протокол  и изпитват  едни  и същи  изпитвани  вещества , могат  да получат  
качествено  и количествено  сходни  резултати . Междулабораторната  
възпроизводимост  се определя  по време  на процесите  на предварително  
валидиране  и на валидиране  и показва  степента , в която  изпитването  
може  да бъде  трансферирано  успешно  между  лабораториите , също  
наричана  възпроизводимост  между  лабораториите  (38).  
Вътрешнолабораторна  възпроизводимост : определяне  на степента , в която  
квалифицирани  служители  в рамките  на една  и съща  лаборатория  могат  да 
възпроизведат  успешно  резултатите , като използват  конкретен  протокол  в 
различни  моменти . Също  наричана  възпроизводимост  в рамките  на 
лабораторията  (38).  
Отклоняваща  се стойност : отклоняващата  се стойност  е наблюдение , 
което  е маркирано  като различно  от други  стойности  в произволно  
избрана  извадка  от популация . 
Осигуряване  на качеството : управленски  процес , при който  спазването  на 
лабораторни  стандарти  за изпитване , изисквания  и процедури  за водене  на 
дневници , както  и точността  на трансфера  на данни , се оценява  от лица , 
които  са независими  от лицата , изпълняващи  изпитването . 
Надеждност : мярка  за степента , в която  даден  метод  за изпитване  може  да 
се извърши  възпроизводимо  в една  и съща  лаборатория  и между  различни  
лаборатории  в течение  на времето , когато  се използва  един  и същи  
протокол . Надеждността  се оценява , като се изчислява  вътрешно - и межд­  
улабораторната  възпроизводимост  (38).  
Кожна  сенсибилизация : имунологичен  процес , който  възниква , когато  
податлив  индивид  е локално  изложен  на химичен  алерген  с предизвикващо  
действие , който  предизвиква  кожна  имунна  реакция , водеща  до развиването  
на контактна  сенсибилизация . 
Стимулационен  индекс  (SI):  стойност , изчислявана  за оценка  на потенциала  
на дадено  изпитвано  вещество  да предизвиква  кожна  сенсибилизация , която  
представлява  съотношението  на пролиферацията  в третираните  групи  
спрямо  тази в паралелната  третирана  с носителя  контролна  група . 
Изпитвано  вещество  (също  наричано  изпитван  химикал ): всяко  вещество  
или смес , изпитвано (а) чрез използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M3 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 758
 
Б.52. ОСТРА  ИНХАЛАТОРНА  ТОКСИЧНОСТ  — МЕТОД  КЛАС  
ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е равностоен  на Указание  за изпитване  
436 на ОИСР  (ОИСР  TG 436) (2009 г.). Първото  TG 403 за остра  
инхалаторна  токсичност  е прието  през 1981 г. и оттогава  е преработено  
(вж. глава  Б.2 от настоящото  приложение  (1). Разработването  на метод  
клас остра  токсичност  за остра  инхалаторна  токсичност  (2) (3) (4) е 
било  счетено  за уместно  след  приемането  на прераработения  метод  
клас остра  токсичност  за остра  орална  токсичност  (глава  Б.1 от 
настоящото  приложение ) (5). Ретроспективна  оценка  на резултатите  
от метод  клас остра  токсичност  за изпитване  на остра  инхалаторна  
токсичност  показа , че методът  е подходящ  за използване  за целите  на 
класифицирането  и етикетирането  (6). Методът  при клас остра  токс­  
ичност  за изпитване  на остра  инхалаторна  токсичност  ще позволи  
използването  на последователни  стъпки  от фиксирани  целеви  конце­  
нтрации  за степенуване  на токсичността  на изпитваните  химикали . 
Смъртността  се използва  като ключова  крайна  точка , обаче  животните , 
изпитващи  силна  болка  или дистрес , страдание  или неизбежна  смърт , 
следва  да бъдат  умъртвени  по хуманен  начин  за да бъде  сведено  до 
минимум  страданието . Насоки  за хуманен  край  са дадени  в Ръково­  
дството  на ОИСР  № 19 (7).  
2. Указания  за провеждането  на и интерпретирането  по настоящия  метод  
за изпитване  могат  да бъдат  намерени  в Ръководство  № 39 за 
изпитвания  на остра  инхалаторна  токсичност  (GD 39) (8).  
3. Определенията , използвани  в контекста  на настоящия  метод  за 
изпитване , са дадени  в допълнение  1 и в GD 39 (8).  
4. Настоящият  метод  за изпитване  осигурява  информация  за опасните  
свойства  и позволява  изпитваният  химикал  да бъде  категоризиран  и 
класифициран  съгласно  Регламент  (ЕО) № 1272/2008 за класифициране  
на химикали , които  причиняват  остра  токсичност  (9). В случай  че се 
изискват  точкови  оценки  на стойности  на LC  50 или анализи  конце­  
нтрация -отговор , подходящият  метод  за изпитване , който  следва  да 
се използва , е глава  Б.2 от настоящото  приложение  (1). Допълнителни  
насоки  за избор  на метод  за изпитване  могат  да бъдат  намерени  в GD 
39 (8). Настоящият  метод  за изпитване  не е специално  предназначен  за 
изпитването  на специализирани  материали , като малко  разтворими  
изометрични  или влакнести  материали , или произведени  наном­  
атериали . 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
5. Преди  обсъждането  на изпитване  в съответствие  с настоящия  метод  за 
изпитване  цялата  налична  информация  за изпитвания  химикал , включ­  
ително  съществуващите  изследвания , чиито  данни  са в подкрепа  да не 
се извършва  допълнително  изпитване , следва  да бъдат  разгледани  от 
лабораторията , извършваща  изпитвания , с цел да се сведе  до минимум  
използването  на животни . Информацията , която  може  да помогне  при 
избора  на най-подходящия  вид, порода , пол, път на експозиция , и на 
подходящи  концентрации  за изпитване , включва  идентификация  на 
изпитвания  химикал , неговата  химична  структура  и физичните  и 
химичните  му свойства ; резултатите  от всякакви  изпитвания  за токс­  
ичност , извършени  in vitro  или in vivo ; очаквани  употреби  и потенциал  
за експозиция  на човека ; налични  данни  за (количествена ) зависимост  
структура -активност  и токсикологични  данни  за химикали  със сходна  
структура . Концентрации , за които  се очаква , че могат  да причинят  
силна  болка  или дистрес , поради  корозивно  ( 1 ) или силно  дразнещо  
въздействие , не следва  да бъдат  изпитвани  с настоящия  метод  за 
изпитване  [вж. GD 39 (8)].  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 759  
( 1 ) Оценката  на корозивността  може  да се основава  на експертна  оценка , като се 
използват  доказателства  като: човешки  опит  и опит  с животни , съществуващи  
данни  (in vitro), напр . глава  Б.40 (10), B.40 А (11) от настоящото  приложение  или 
ОИСР  TG 435 (12), стойности  на рН, информация  за аналогични  химикали  или 
всякакви  други  подходящи  данни .
 ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
6. Принципът  на изпитването  е, че въз основа  на поетапна  процедура  се 
получава  достатъчна  информация  за острата  инхалаторна  токсичност  на 
изпитвания  химикал  за период  на експозиция  от 4 часа, за да се даде  
възможност  за неговото  класифициране . Друга  продължителност  на 
експозицията  може  да се прилага  за изпълнение  на специфични  регул­  
аторни  цели . Изпитват  се по 3 животни  от всеки  пол, независимо  на 
коя от определените  стъпки  на концентрацията . В зависимост  от 
смъртността  и/или терминалното  състояние  на животните  2 стъпки  
могат  да бъдат  достатъчни  за оценка  относно  острата  токсичност  на 
изпитвания  химикал . Ако са налице  доказателства , че единият  пол е по- 
възприемчив  от другия , изпитването  може  да бъде  продължено  само  с 
по-възприемчивия  пол. Резултатите  от предходната  стъпка  определят  
следващата  стъпка  така, че: 
а) не е необходимо  по-нататъшно  изпитване ; 
б) изпитване  на три животни  от пол; или 
в) изпитване  с 6 животни  само  от по-възприемчивия  пол, т.е. 
очакванията  за по-ниската  граница  в класа  токсичност  следва  да се 
основават  на 6 животни  във всяка  група  за изпитване  на определена  
концентрация , независимо  от техния  пол. 
7. Умиращи  животни  или животни , очевидно  изпитващи  болка  или 
показващи  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , следва  да 
бъдат  умъртвени  по хуманен  начин , като при интерпретирането  на 
резултатите  от изпитванията  те се третират  по същия  начин , както  
животните , умрели  по време  на изпитването . Критериите  за вземане  
на решение  за умъртвяване  на умиращи  или силно  страдащи  животни  
и указанията  за разпознаване  на предвидима  или неизбежна  смърт , са 
предмет  на Ръководство  № 19 за хуманен  край  (7). 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
8. Следва  да се използват  здрави  млади  полово  зрели  животни  от 
обичайно  употребяваните  за лабораторни  изследвания  породи . Предп­  
очитаният  вид е плъхът  и трябва  да се представи  обосновка , ако са 
използвани  други  видове . 
Подготовка  на животните  
9. Женските  индивиди  следва  да не са раждали  и да не са бременни . Към 
деня  на експозицията  животните  следва  да са млади  полово  зрели  
индивиди  на възраст  от 8 до 12 седмици  и с телесно  тегло  в рамките  
на ± 20 % от средното  тегло  за всеки  пол за всички  по-рано  
експонирани  животни  от същата  възраст . Животните  се избират  
произволно  и се маркират  за индивидуална  идентификация . 
Животните  се държат  в техните  клетки  най-малко  5 дни преди  
началото  на изпитването , за да се даде  възможност  за аклиматизиране  
към лабораторните  условия . Необходимо  е също  животните  да се 
аклиматизират  към изпитвателната  апаратура  за кратък  период  преди  
изпитването , тъй като това ще намали  стреса , предизвикан  от 
въвеждането  в новата  среда . 
Отглеждане  на животните  
10. Температурата  на помещението , в което  се отглеждат  опитните  
животни , следва  да бъде  22 ± 3 °C. В идеалния  случай  относителната  
влажност  следва  да бъде  поддържана  в интервала  от 30—70 %, макар  
че поддържането  в този интервал  може  да не е възможно , когато  се 
използва  вода  като носител . Преди  и след  експозициите  животните  
обичайно  следва  да се поставят  в клетките  в групи  по пол и конце­  
нтрация , но броят  на животните  в дадена  клетка  не следва  да възпреп­  
ятства  точните  наблюдения  над всяко  животно  и следва  да свежда  до 
минимум  загубите  поради  канибализъм  и борба . За животни , при които  
експозицията  е само  през носа , може  да е необходимо  същите  да бъдат  
аклиматизирани  към ограничителните  тръби . Ограничителните  тръби  
не следва  да причиняват  ненужен  стрес  у животните  поради  
физични , термични  или причини , свързани  с обездвижване . Огранича­  
ването  може  да засегне  физиологични  крайни  точки  като телесната  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 760
 
температура  (хипертермия ) и/или минутния  дихателен  обем . Ако са 
налични  типови  данни , които  показват , че не настъпват  такива  
осезаеми  промени , тогава  не е необходимо  предварително  адаптиране  
към ограничителните  тръби . Животни , при които  експозицията  на 
аерозол  е на цялото  тяло , следва  да се настаняват  отделно  по време  
на експозицията , за да се предотврати  възможността  животното  да 
филтрува  изпитвателния  аерозол  през козината  на намиращи  се в 
същата  клетка  други  животни . Освен  по време  на експозицията , 
могат  да се използват  конвенционални  и сертифицирани  лабораторни  
храни , придружени  с неограничено  количество  битова  питейна  вода . 
Осветлението  трябва  да бъде  изкуствено , като последователността  е 
12 часа светлина /12 часа тъмнина . 
Инхалационни  камери  
11. При избора  на инхалационна  камера  следва  да бъдат  разгледани  
естеството  на изпитвания  химикал  и целта  на изпитването . Предпоч­  
итаният  начин  на експозиция  е само  през носа  (в този термин  се 
включват  експозиции  само  на главата , само  през носа  или само  през 
муцуната ). Експозицията  само  през носа  обичайно  се предпочита  при 
изследване  на течни  и твърди  аерозоли , както  и на пари , които  могат  да 
кондензират  с образуване  на аерозоли . Специалните  цели  на 
изследването  могат  да се постигнат  по-добре  чрез използване  на 
режим  на експозиция  на цялото  тяло , но това следва  да бъде  обос­  
новано  в доклада  от изследването . За да се гарантира  стабилност  на 
атмосферата  при използване  на камера  за експозиция  на цялото  тяло , 
общият  обем  на изпитваните  животни  не трябва  да надвишава  5 % от 
обема  на камерата . Принципите  на техниките  за експозиция  само  през 
носа  и за експозиция  на цялото  тяло  и техните  специфични  предимства  
и недостатъци  са описани  в GD 39 (8).  
УСЛОВИЯ  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Прилагане  на концентрациите  
12. Препоръчва  се продължителност  на експозицията , фиксирана  на четири  
часа, с изключение  на времето  за уравновесяване . Различна  продължит­  
елност  може  да е необходима  за изпълнение  на специфични  изис­  
квания , но следва  да се даде  обосновка  в доклада  от изследването  
[вж. GD 39 (8)]. Животните , експонирани  в камери  за цялото  тяло , 
следва  да се настаняват  поотделно , за да се предотврати  поглъщането  
на изпитвания  химикал  в резултат  от поддържане  на външния  вид на 
други  индивиди  в същата  клетка . По време  на експозицията  не трябва  
да се дава храна . Вода  може  да се дава по време  на експозиция  на 
цялото  тяло . 
13. Животните  се експонират  на изпитвания  химикал , който  представлява  
газ, пари , аерозол  или смес  от тях. Агрегатното  състояние , което  трябва  
да бъде  изпитано , зависи  от физичните  и химичните  свойства  на 
изпитвания  химикал , избраната  концентрация , и/или най-вероятната  
физична  форма  по време  на манипулирането  и употребата  на 
изпитвания  химикал . Хигроскопични  и химически  реактивоспособни  
изпитвани  химикали  следва  да бъдат  изпитвани  в среда  от сух 
въздух . Следва  да се полагат  грижи  за избягване  достигането  на конце­  
нтрации , при които  може  да бъде  причинена  експлозия . 
Разпределение  според  размера  на частиците  
14. Следва  да бъде  извършено  определяне  на размера  на частиците  за 
всички  аерозоли  и за парите , които  могат  да кондензират  с образуване  
на аерозоли . За да могат  да бъдат  експонирани  всички  относими  части  
на дихателните  пътища  се препоръчват  аерозоли  с диаметър , равен  на 
аеродинамичния  диаметър  при медианата  на масата  на 
частиците  (MMAD), намиращ  се в диапазон  от 1 до 4 μm и с геом­  
етрично  стандартно  отклонение  (σ g ) в диапазон  от 1,5 до 3,0 (8) (13) 
(14). Въпреки  че следва  да се положи  разумно  усилие  за спазване  на 
този стандарт , ако това не може  да бъде  постигнато  следва  да бъде  
предоставена  експертна  оценка . Например  стойностите  за метални  пари  
могат  да бъдат  по-малки  от този стандарт , а за заредени  частици , 
влакна  и хигроскопични  материали  (които  увеличават  размера  си във 
влажната  среда  на дихателните  пътища ) могат  да надхвърлят  този 
стандарт . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 761
 
Подготовка  на изпитвания  химикал  в носител  
15. За постигане  на подходяща  концентрация  и размер  на частиците  на 
изпитвания  химикал  в атмосферата  може  да бъде  използван  носител . 
По правило  следва  да бъде  предпочитана  водата . Частиците  от даден  
материал  могат  да бъдат  подложени  на механични  процеси  за да се 
постигне  изискваното  разпределение  според  размера  на частиците , но 
трябва  да се вземат  мерки  изпитваният  химикал  да не бъде  разложен  
или променен . В случаите , когато  се предполага , че механичните  
процеси  са довели  до изменение  на състава  на изпитвания  химикал  
(например  причинена  от триене  много  висока  температура  в резултат  
от прекомерно  смилане ), съставът  на изпитвания  химикал  следва  да 
бъде  проверен  по аналитичен  път. Следва  да бъдат  взети  адекватни  
мерки  да не се допусне  замърсяване  на изпитвания  химикал . Не е 
необходимо  да се изпитват  неронливи  гранулирани  материали , които  
са целенасочено  изготвени  така, че да не могат  да бъдат  инхалирани . За 
да се докаже , че при манипулирането  на гранулирания  материал  не се 
произвеждат  частици , които  могат  да бъдат  вдишвани , следва  да се 
приложи  изпитване  чрез триене . Ако при изпитване  чрез триене  
бъдат  произведени  частици , които  могат  да бъдат  вдишвани , следва  
да се извърши  изпитване  за инхалаторна  токсичност . 
Контролни  животни  
16. Паралелна  отрицателна  контролна  група  (въздух ) не е необходима . 
Когато  за подпомагане  генерирането  на атмосферата  за изпитване  се 
използва  носител , различен  от вода , контролна  група  за носителя  
следва  да се използва  само  в случай  че не са достъпни  данни  за инхал­  
аторна  токсичност  за минали  периоди . Ако при дадено  изследване  за 
токсичност  на изпитван  химикал  в състав  с носител  не бъде  установена  
токсичност , от това следва , че носителят  не е токсичен  при конце­  
нтрацията  на изпитване ; следователно  не е необходима  контрола  за 
носителя . 
МОНИТОРИНГ  НА УСЛОВИЯТА  НА ЕКСПОЗИЦИЯ  
Въздушен  поток  в камерата  
17. Въздушният  поток  през камерата  трябва  да бъде  внимателно  
контролиран , непрекъснато  наблюдаван  и записван  най-малко  на 
всеки  час по време  на всяка  експозиция . Мониторингът  на конце­  
нтрацията  (или стабилността ) на атмосферата  за изпитване  
представлява  цялостно  измерване  на всички  динамични  параметри  и 
предоставя  непряко  средство  за контрол  на всички  относими  
динамични  параметри , свързани  с генериране  на атмосфера . 
Специално  внимание  следва  да се обърне  на избягване , при камери  
за експозиция  само  през носа , на повторно  инхалиране  в случаи , при 
които  системата  за експозиция  не може  да осигури  адекватна  динамика  
на потока  на атмосферата  с изпитвания  химикал . Съществуват  
предписани  методологии , които  могат  да се използват  за доказване , 
че в рамките  на избраните  работни  условия  не настъпва  повторно  
инхалиране  (8) (15). Концентрацията  на кислород  следва  да бъде  не 
по-малко  от 19 %, а концентрацията  на въглероден  диоксид  не трябва  
да превишава  1 %. Ако има основание  да се смята , че тези стандарти  
не могат  да бъдат  спазени , концентрациите  на кислорода  и на 
въглеродния  диоксид  следва  да се измерват . 
Температура  и относителна  влажност  на камерата  
18. Температурата  в камерата  трябва  да се поддържа  на 22 ± 3 °C. Относ­  
ителната  влажност  в зоната  на дишане  на животните  — както  за 
експозиция  само  през носа , така и за експозиция  на цялото  тяло  — 
трябва  да бъде  наблюдавана  и записвана  най-малко  три пъти  за продъ­  
лжителности  до 4 часа и на всеки  час за по-кратки  продължителности . 
В идеалния  случай  относителната  влажност  трябва  да бъде  поддържана  
в диапазона  между  30 и 70 %, но това може  или да се окаже  
непостижимо  (например  при изпитване  на смеси  на основата  на 
вода ), или да не може  да бъде  измерено  поради  въздействие  на 
изпитвания  химикал  върху  метода  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 762
 
Изпитван  химикал : номинална  концентрация  
19. Когато  е осъществимо , номиналната  концентрация  в камерата  за 
експозиция  следва  да се изчислява  и записва . Номиналната  конце­  
нтрация  е масата  на генерирания  изпитван  химикал , разделена  на 
общия  обем  въздух , преминал  през камерната  система . Номиналната  
концентрация  не се използва  за характеризиране  на експозицията  на 
животните , а сравнение  на номиналната  концентрация  и действит­  
елната  концентрация  дава показание  за ефикасността  на генериране  
на системата  за изпитване  и следователно  може  да се използва  за 
откриване  на проблеми  при генерирането . 
Изпитван  химикал : действителна  концентрация  
20. Действителната  концентрация  е концентрацията  на изпитвания  химикал  
в зоната  на дишане  на животните  в дадена  инхалационна  камера . 
Действителни  концентрации  могат  да бъдат  получени  чрез специфични  
методи  (например  чрез пряко  пробовземане , свързани  с адсорбция  или 
с химична  реакция  методи  и последващо  аналитично  охарактеризиране ) 
или чрез неспецифични  методи , като гравиметричен  анализ  с 
филтруване . Използването  на гравиметричен  анализ  е приемливо  само  
за еднокомпонентни  прахови  аерозоли  или за аерозоли  от ниско  
летливи  течности  и следва  да бъде  подпомогнато  от подходящо  спец­  
ифично  за изпитвания  химикал  охарактеризиране  чрез предварително  
изследване . Концентрацията  на многокомпонентни  прахови  аерозоли  
също  може  да бъде  определяна  чрез гравиметричен  анализ . Това  
обаче  изисква  аналитични  данни , които  доказват , че съставът  на 
намиращия  се във въздуха  материал  е подобен  на този на изходния  
материал . Ако тази информация  не е налична , може  да е необходимо  
извършване  на анализ  на изпитвания  химикал  (в идеалния  случай  в 
състоянието , в което  е разтворен  във въздуха ), повтарящо  се на 
редовни  интервали  по време  на изследването . За агенти  в аерозолна  
форма , които  могат  да се изпаряват  или да сублимират , следва  да се 
покаже , че всички  фази  са събрани  по избрания  метод . Целевата , 
номиналната  и действителната  концентрации  следва  да бъдат  
посочени  в доклада  от изследването , но в статистически  анализи  за 
изчисляване  на стойностите  на леталната  концентрация  се използват  
само  действителните  концентрации . 
21. По възможност  следва  да се използва  една  партида  от изпитвания  
химикал , като изпитваната  проба  следва  да се съхранява  при условия , 
при които  се поддържат  нейната  чистота , хомогенност  и устойчивост . 
Преди  началото  на изследването  следва  да се направи  
охарактеризиране  на изпитвания  химикал , включително  неговата  
чистота  и, ако е технически  осъществимо , идентичността , както  и 
количествата  на определените  замърсители  и примеси . Това  може  да 
бъде  доказано  от, но не се ограничава  до, следните  данни : времето  на 
задържане  и относителната  площ  на пика , молекулната  маса  от анализи  
чрез масспектрометрия  или газова  хроматография , или други  оценки . 
Въпреки  че лабораторията , извършваща  изпитвания , не носи  отго­  
ворност  за идентифицирането  на пробата  за изпитване , може  да е 
разумно  лабораторията , извършваща  изпитвания , да потвърди  
охарактеризирането  на финансиращия , дори  и в ограничена  степен  
(например  цвят , физична  природа  и др.). 
22. Атмосферата  на експозицията  трябва  да бъде  поддържана  постоянна , 
доколкото  е практически  възможно , и да бъде  наблюдавана  
непрекъснато  и/или периодично  в зависимост  от метода  за анализ . 
Когато  се прилага  периодично  пробовземане , пробите  от атмосферата  
в камерата  трябва  да се вземат  най-малко  два пъти  при четиричасово  
изследване . Ако това е практически  неосъществимо  поради  ограничена  
скорост  на въздушния  поток  или ниска  концентрация , през целия  
период  на експозиция  може  да бъде  извършено  само  едно  пробовз­  
емане . Ако се получат  значителни  колебания  в стойностите  между  
отделните  проби , следващите  концентрации  следва  да бъдат  
изпитвани  с четири  пробовземания  на експозиция . Индивидуалните  
проби  от концентрацията  в камерата  не трябва  да се отклоняват  от 
средната  концентрация  в камерата  с повече  от ± 10 % за газовете  и 
парите  или не повече  от ± 20 % за течните  или твърдите  аерозоли . 
Времето  за уравновесяване  на камерата  (t 95 ) следва  да се изчислява  и 
записва . Продължителността  на дадена  експозиция  обхваща  времето , за 
което  се генерира  изпитваният  химикал , като при това се взема  
предвид  изискваният  период  за постигане  на t 95 . Указания  за 
оценката  на t 95 могат  да бъдат  намерени  в GD 39 (8).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 763
 
23. При много  сложни  смеси , съставени  от пари /газове  и аерозоли  
(например  атмосфера  след  горене  и изпитвани  химикали , отделяни  от 
целеви  продукти /оборудване  за крайна  употреба ), всяка  фаза  може  да 
реагира  по различен  начин  в инхалационната  камера  и следователно  от 
всяка  фаза  (пари /газ и аерозол ) следва  да бъде  избрано  най-малко  едно  
вещество  (аналит ), служещо  като показател , като обичайно  това е 
основното  активно  вещество  в сместа . Когато  изпитваният  химикал  е 
смес , аналитичната  концентрация  следва  да се докладва  за цялата  смес , 
а не само  за активната  съставка  или за компонента  (аналита ). Допълн­  
ителна  информация  относно  действителните  концентрации  може  да 
бъде  намерена  в GD 39 (8).  
Изпитван  химикал : разпределение  по размери  на частиците  
24. Разпределението  според  размера  на частиците  на аерозоли  трябва  да се 
определи  най-малко  два пъти  по време  на всяка  4-часова  експозиция , 
като се използва  каскаден  импактор  или алтернативен  инструмент , като 
например  спектрометър  за определяне  на размера  на аеродинамични  
частици . Ако може  да бъде  доказана  равностойността  на резултатите , 
получени  от каскадния  импактор  и от алтернативния  инструмент , 
тогава  алтернативният  инструмент  може  да бъде  използван  по време  
на цялото  изследване . Успоредно  с основния  инструмент  следва  да 
бъде  използвано  второ  устройство , като например  гравиметричен  
филтър  или поглътител  с въвеждаща  тръбичка  (импинджер )/ 
барботиращ  апарат , за да се потвърди  ефикасността  на пробовземането  
на основния  инструмент . Масовата  концентрация , получена  чрез анализ  
на размера  на частиците , следва  да бъде  в рамките  на разумни  граници  
от масовата  концентрация , получена  чрез филтруване  [вж. GD 39 (8)]. 
В случай  че тяхната  равностойност  може  да бъде  доказана  в ранния  
етап на изследването , могат  да не се извършват  допълнителни  
измервания  за потвърждение . От съображения  за хуманно  отношение  
към животните  следва  да се вземат  мерки  за свеждане  до минимум  на 
недостатъчните  за формулиране  на заключение  данни , които  могат  да 
доведат  до необходимост  от повтаряне  на дадена  експозиция . 
Определяне  на размера  на частиците  трябва  да бъде  направено  за 
пари , ако съществува  вероятност  кондензация  на парите  да доведе  до 
образуване  на аерозол , или ако бъдат  открити  частици  в атмосфера  от 
пари  с потенциал  за смесени  фази  (вж. точка  14).  
ПРОЦЕДУРА  
Основно  изпитване  
25. За всяка  стъпка  се използват  по три животни  от пол, или шест  животни  
от по-възприемчивия  пол. Ако експозиция  на вид гризач , различен  от 
плъх , е само  през носа , максималната  продължителност  на експоз­  
ицията  може  да бъде  адаптирана  така, че да се минимизира  специф­  
ичният  за този вид дистрес . Равнищетото  на концентрация , което  се 
използва  като начална  доза, се избира  от едно  от четири  фиксирани  
равнища  и равнището  на началната  концентрация  следва  да бъде  това, 
при което  с най-голяма  вероятност  се постига  токсичност  в някои  от 
животните , на които  се прилага  дозата . Схемите  за изпитване  за газове , 
пари  и аерозоли  (включени  в допълнения  2—4) представляват  
изпитване  с граничните  стойности  на категории  1—4 от регламента  
относно  класифицирането , етикетирането  и опаковането  (9) за газове  
(100, 500, 2 500, 20 000 ppm/4h) ( допълнение  2), за пари  (0,5, 2, 10, 20 
mg/L/4 часа) (допълнение  3) и за аерозоли  (0,05, 0,5, 1, 5 mg/L/4 часа) 
(допълнение  4). Категория  5, която  не се прилага  в Регламент  (ЕО) 
№ 1272/2008 (9), се отнася  до концентрации  над съответните  
гранични  концентрации . За всяка  начална  концентрация  се прилага  
съответната  схема  за изпитване . В зависимост  от броя  на умъртвените  
по хуманен  начин  или умрели  животни  процедурата  за изпитване  
следва  посочените  стрелки , докато  може  да бъде  направено  
категоризиране . 
26. Времевият  интервал  между  групите  за експозиция  се определя  от 
първоначалното  появяване  на токсичните  признаци  и от тяхната  продъ­  
лжителност  и сила . Експонирането  на животните  на следващото  
равнище  на концентрация  следва  да бъде  забавено , докато  се получи  
достатъчна  увереност  за преживяемост  на изпитваните  преди  това 
животни . Препоръчва  се да има период  от три или четири  дни между  
експозициите  на всяко  равнище  на концентрация , за да се даде  
възможност  за наблюдения  за забавена  токсичност . При необходимост  
времевият  интервал  може  да бъде  регулиран , напр . в случай  на 
отговори , от които  не може  да се направи  заключение . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 764
 
Изпитване  при пределна  концентрация  
27. Изпитване  при пределна  концентрация  се използва , когато  се знае или 
се очаква  изпитваният  химикал  да бъде  практически  нетоксичен , т.е. 
предизвикващ  токсичен  отговор  само  над нормативно  определената  
пределна  концентрация . Информация  за токсичността  на изпитвания  
химикал  може  да бъде  получена  от познания  за подобни  изпитани  
вещества  или смеси , като се вземат  предвид  идентичността  и проце­  
нтното  съдържание  на компонентите , за които  е известно , че са с токс­  
икологично  значение . В случаите , когато  има малко  или няма  
информация  за токсичността  на изпитвания  химикал , или при които  
се очаква  изпитваният  химикал  да бъде  токсичен , следва  да се 
проведе  основното  изпитване  [по-нататъшни  насоки  могат  да бъдат  
намерени  в GD 39 (8)].  
28. Като  се използва  нормалната  процедура , три животни  от пол, или шест  
животни  от по-възприемчивия  пол се експонират  на концентрации  от 
20 000 ppm за газове , 20 mg/l за пари  и 5 mg/l за прах /мъгла  съответно  
(ако е постижимо ), като това служи  за изпитване  при пределна  конце­  
нтрация  за настоящия  метод  за изпитване . При изпитване  на аерозоли  
основната  цел следва  да бъде  постигането  на размер  на частиците , 
позволяващ  вдишването  им (т.е. MMAD от 1—4 μm). Това  е 
възможно  за повечето  изпитвани  химикали  при концентрация  от 2 
mg/l. Изпитване  на аерозоли  при концентрация , по-висока  от 2 mg/l, 
следва  да се извършва  само  ако може  да бъде  постигнат  размер  на 
частиците , позволяващ  вдишването  им [вж. GD 39 (8)]. В съответствие  
с Глобалната  хармонизирана  система  (16), изпитването  с превишение  
на пределната  концентрация  не се насърчава  от съображения  за 
хуманно  отношение  към животните . Изпитване  в категория  5 от Глоб­  
алната  хармонизирана  система  (16), която  не се прилага  по Регламент  
(ЕО) № 1272/2008 (9), следва  да се има предвид  само  когато  
съществува  голяма  вероятност  резултатите  от такова  изпитване  да 
имат  пряка  относимост  за опазване  здравето  на хората , и следва  да 
се представи  обосновка  в доклада  от изследването . В случай  на поте­  
нциално  взривоопасни  изпитвани  химикали  следва  да се положат  
усилия  за избягване  на условия , предразполагащи  експлозия . С оглед  
избягване  на ненужно  използване  на изпитвани  животни  следва  да се 
извърши  изпитване  без животни  преди  изпитването  при пределна  
концентрация , за да се гарантира , че в камерата  могат  да бъдат  пост­  
игнати  условията  за изпитването  при пределна  концентрация . 
НАБЛЮДЕНИЯ  
29. Върху  животните  трябва  да бъдат  извършвани  чести  клинични  набл­  
юдения  по време  на периода  на експозиция . След  експозицията  
клинични  наблюдения  следва  да бъдат  извършвани  най-малко  два 
пъти  в деня  на експозиция , или по-често , ако има показания  от 
отговора  на животните  на третирането , и най-малко  един  път дневно  
след  това общо  в продължение  на 14 дни. Продължителността  на 
периода  на наблюдение  не е фиксирана , но следва  да се определя  от 
характера  и времето  на поява  на клиничните  признаци  и от продължит­  
елността  на възстановителния  период . Моментите  във времето , в които  
признаците  на токсичност  се появяват  и изчезват , са важни , особено  
ако съществува  тенденция  към забавяне  появата  на признаците  на токс­  
ичност . Всички  наблюдения  систематично  се записват  с индивидуални  
архиви , които  се поддържат  за всяко  животно . Животните , намерени  в 
терминално  състояние , и животните , показващи  признаци  на силна  
болка  и/или продължителни  признаци  на силен  дистрес , следва  да 
бъдат  умъртвени  по хуманен  начин  по причини , свързани  с 
хуманното  отношение  към животните . При провеждането  на 
изпитвания  за клинични  признаци  на токсичност  трябва  да се 
внимава  първоначално  трудно  забележимите  и преходните  
респираторни  промени  в резултат  от процедурата  по експозицията  да 
не бъдат  взети  погрешно  за ефекти , свързани  с третирането . Следва  да 
бъдат  взети  предвид  принципите  и критериите , резюмирани  в Ръково­  
дството  за хуманен  край  (7). Когато  животните  са умъртвени  по 
хуманни  причини  или са намерени  мъртви , времето  на смъртта  им 
следва  да бъде  записано  колкото  е възможно  по-точно . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 765
 
30. Наблюденията  в клетките  следва  да включват  изменения  в кожата  и 
козината , очите  и лигавиците , също  и в дихателната , кръвоносната , 
автономната  и централната  нервна  система , както  и в соматомоторната  
активност  и поведението  на животните . Всякакво  разграничение  между  
локални  и системни  ефекти  трябва  да бъде  отбелязвано , когато  е 
възможно . Вниманието  следва  да бъде  насочено  към наблюдения  на 
треперене , конвулсии , слюноотделяне , диария , летаргия , сън и кома . 
Измерването  на ректалната  температура  може  да предостави  
подкрепящи  доказателства  за рефлекторно  забавено  дишане  или 
хипотермия /хипертермия , свързани  с третирането  или затвореното  
пространство . 
Телесно  тегло  
31. Индивидуалното  тегло  на животните  следва  да бъде  записвано  веднъж  
през периода  на аклиматизация , в деня  на експозицията  преди  
експозиция  (ден 0), и най-малко  през дни 1, 3 и 7 (и след  това един  
път седмично ), и към момента  на настъпване  на смъртта  или евта­  
назията , ако е след  ден 1. Телесното  тегло  е признато  като изключ­  
ително  важен  показател  за токсичност  и следователно  животни , 
проявяващи  устойчиво  снижаване  с > 20 % в сравнение  със стой­  
ностите  от предварителното  изследване , трябва  да бъдат  стриктно  набл­  
юдавани . В края  на периода  след  експозицията  преживелите  животни  
се претеглят  и след  това се умъртвяват  по хуманен  начин . 
Патология  
32. Всички  изпитвани  животни , включително  умрелите  по време  на 
изпитването  или подложените  на евтаназия  и извадени  от изследването  
поради  причини , свързани  с хуманното  отношение  към животните , 
следва  да бъдат  подложени  на макроскопска  аутопсия . Ако аутопсията  
не може  да се извърши  веднага  след  откриването  на мъртвото  животно , 
трупът  на животното  трябва  да бъде  охладен  (но не замразен ) при 
температури , достатъчно  ниски  за да бъде  сведена  до минимум  
автолизата . Аутопсията  следва  да се извърши  във възможно  най- 
кратък  срок , обичайно  в рамките  на един  или два дни. Следва  да 
бъдат  записани  всички  макроскопски  патологични  изменения  за всяко  
животно , като се обърне  особено  внимание  на всякакви  изменения  в 
дихателните  пътища . 
33. С оглед  увеличаване  на стойността  за интерпретиране  на изследването  
могат  да бъдат  разгледани  допълнителни  изследвания , включени  a 
priori  по план , като например  измерване  на теглото  на белите  
дробове  на преживелите  плъхове  и/или осигуряване , чрез 
микроскопско  изследване  на дихателните  пътища , на доказателства  за 
дразнене . Изследваните  органи  могат  да включват  и тези, които  
представят  доказателство  за макроскопска  патология  при животните , 
преживели  24 часа или повече , както  и органите , за които  е известно  
или се очаква  да бъдат  засегнати . Микроскопското  изследване  на целия  
респираторен  тракт  може  да предостави  полезна  информация  за 
изпитвани  химикали , които  реагират  с вода , такива  като киселини  и 
хигроскопични  изпитвани  химикали . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
34. Следва  да бъдат  посочени  индивидуални  данни  за животните  относно  
тяхното  телесно  тегло  и находките  при аутопсията . Данните  от клин­  
ичните  наблюдения  следва  да бъдат  обобщени  в таблична  форма , 
показваща  за всяка  от изпитваните  групи  броя  на използваните  
животни , броя  на животните , проявяващи  специфични  признаци  за 
токсичност , броя  на животните , намерени  мъртви  по време  на 
изпитването  или умъртвени  по хуманни  причини , времето  на 
настъпване  на смъртта  на отделните  животни , описание  и изменение  
във времето  на токсичните  ефекти  и обратимостта  им, както  и 
находките  при аутопсията . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 766
 
Доклад  от изпитването  
35. Докладът  от изпитването  по целесъобразност  следва  да включва  
следната  информация : 
Изпитвани  животни  и отглеждане  
— описание  на условията  в клетките , включително : брой  (или промяна  
в броя ) на животните  в една  клетка , материал  за постилане , 
температура  и относителна  влажност  на околната  среда , продължит­  
елност  на излагане  на светлина  и идентифициране  на хранителния  
режим , 
— използван  вид/порода  и обосновка  за използване  за видове , 
различни  от плъх , 
— брой , възраст  и пол на животните , 
— метод  на случаен  подбор , 
— подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  тип на хранителния  режим /източник , водоизточник ), 
— описание  на всякакво  кондициониране  преди  изпитването , включ­  
ително  хранителен  режим , карантина  и лечение  на заболявания . 
Изпитван  химикал  
— физична  природа , чистота  и, където  е относимо , физични  и 
химични  свойства  (включително  изомеризация ), 
— идентификационни  данни  и номер  съгласно  химичния  регистър  на 
Службата  за химични  индекси  (CAS), ако са известни ; 
Носител  
— обосновка  за използването  на носител  и обосновка  за избора  на 
носителя  (ако е различен  от вода ), 
— данни  за минали  периоди  или паралелни  данни , доказващи  че 
носителят  не пречи  на резултата  от изследването ; 
Инхалационна  камера  
— описание  на инхалационната  камера , включително  размери  и обем , 
— източник  и описание  на оборудването , използвано  за експозицията  
на животните , както  и за генерирането  на атмосферата , 
— оборудване  за измерване  на температурата , относителната  
влажност , размера  на частиците  и действителната  концентрация , 
— източник  на въздух , обработка  на доставяния /извличания  въздух  и 
система , използвана  за кондициониране , 
— използвани  методи  за калибриране  на оборудването  за гарантиране  
на хомогенна  атмосфера  за изпитване , 
— разлика  в налягането  (положителна  или отрицателна ), 
— отвори  за експозиция  за всяка  камера  (експозиция  само  през носа ); 
местоположение  на животните  в системата  (експозиция  на цялото  
тяло ), 
— хомогенност /устойчивост  във времето  на атмосферата  за изпитване , 
— разположение  на датчиците  за температура  и относителна  влажност  
и пробовземане  на атмосферата  за изпитване  в камерата , 
— скорости  на въздушния  поток , скорост  на въздушния  поток  при 
отвор  за експозиция  (експозиция  само  през носа ) или брой  
животни  на камера  (експозиция  на цялото  тяло ), 
— информация  за оборудването , използвано  за измерване  на кислород  
и въглероден  диоксид , ако е приложимо , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 767
 
— време , необходимо  за достигане  на уравновесяване  на инхалац­  
ионната  камера  (t 95 ), 
— брой  изменения  на обема  на час, 
— измервателни  прибори  (ако е приложимо ); 
Данни  за експозицията  
— обосновка  за избора  на целева  концентрация  в основното  
изследване , 
— номинални  концентрации  (обща  маса  на изпитвания  химикал , 
генерирана  в инхалационната  камера , разделена  на преминалия  
през камерата  обем  въздух ), 
— действителни  концентрации  на изпитвания  химикал , взети  от зоната  
на дишане  на животните ; за изпитвани  смеси , които  произвеждат  
хетерогенни  физични  форми  (газове , пари , аерозоли ), всяка  от тези 
форми  може  да бъде  анализирана  отделно , 
— всички  концентрации  във въздуха  следва  да бъдат  докладвани  в 
единици  за масова  концентрация  (mg/l, mg/m  3 и т.н.), единици  за 
отношение  на обем  (напр . ppm, ppb) могат  също  да бъдат  
докладвани  в скоби , 
— разпределение  на частиците  по размер , аеродинамичен  диаметър  
при медианата  на масата  на частиците  (MMAD) и геометрично  
стандартно  отклонение  (σ g ), включително  методите  за изчис­  
ляването  им. Отделните  анализи  на размерите  на частиците  следва  
да бъдат  докладвани ; 
Условия  на изпитването  
— подробна  информация  за приготвянето  на изпитвания  химикал , 
включително  подробна  информация  за всякакви  процедури , 
използвани  за намаляване  на размера  на частиците  на твърди  
вещества  или за приготвяне  на разтвори  на изпитвания  химикал . 
В случаите , когато  механични  процеси  може  да са променили  
състава  на изпитван  химикал , се включват  резултатите  от 
анализите  за проверка  на състава  на изпитвания  химикал , 
— описание  (за предпочитане  включващо  схема ) на оборудването , 
използвано  за генериране  на атмосферата  за изпитване  и за 
експозиция  на животните  на атмосферата  за изпитване , 
— подробни  данни  за използвания  метод  за анализ  на химикала  и за 
валидирането  на метода  (включително  и ефикасността  на добива  на 
изпитвания  химикал  от матрицата  на пробата ), 
— обосновката  за избора  на концентрациите  за изпитване ; 
Резултати  
— таблично  представяне  на данните  за температурата , относителната  
влажност  и въздушния  поток  в камерата , 
— таблично  представяне  на данните  за номиналната  и действителната  
концентрация  в камерата , 
— таблично  представяне  на данните  за размера  на частиците , включ­  
ително  аналитични  данни  за пробовземането , за разпределението  на 
частиците  по размери , и изчисления  на MMAD и σ g , 
— таблично  представяне  на данните  за отговора  и на равнището  на 
концентрация  за всяко  животно  (т.е. животно , показващо  признаци  
на токсичност , включително  смъртност , природа , сила  и продължит­  
елност  на ефектите ), 
— индивидуалните  телесни  тегла  на животните , измерени  на съотв­  
етните  дни от изследването , дата и време  на смъртта , ако е преди  
деня , за който  е планирано  умъртвяването ; развитие  във времето  от 
първоначалното  появяване  на признаци  за токсичност  и дали  са 
били  обратими  за всяко  животно , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 768
 
— находки  от аутопсията  и хистопатологични  находки  за всяко  
животно , ако има такива , 
— класифицирането  в категория  от регламента  относно  класиф­  
ицирането , етикетирането  и опаковането , и граничната  стойност  
на LC  50 ; 
Дискусия  и интерпретиране  на резултатите  
— особено  внимание  следва  да се обърне  на описанието  на методите , 
използвани  за съответствие  с критериите  на настоящия  метод  за 
изпитване , например  пределната  концентрация , или размера  на 
частиците , 
— в контекста  на цялостните  констатации  следва  да бъде  разгледан  
въпросът  дали  частиците  могат  да бъдат  вдишвани , особено  ако 
не е било  възможно  спазването  на критериите  за размер  на част­  
иците , 
— съгласуваността  на методите , използвани  за определяне  на номин­  
алните  и действителните  концентрации , както  и отношението  на 
действителната  концентрация  към номиналната  концентрация , 
трябва  да бъдат  включени  в общата  оценка  на изследването , 
— следва  да бъдат  разгледани  вероятната  причина  за смъртта  и прео­  
бладаващият  начин  на действие  (системно  срещу  локално ), 
— трябва  да се даде  обосновка , ако е имало  необходимост  от 
умъртвяване  по хуманен  начин  на животни , изпитващи  болка  или 
показващи  признаци  на силен  и продължителен  дистрес , въз основа  
на критериите  в Ръководството  на ОИСР  за хуманен  край  (7). 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) Глава  Б.2 от настоящото  приложение  („Остра  токсичност  (инхал­  
аторна )“). 
(2) Holzhütter H-G, Genschow E, Diener W, and Schlede E (2003). Dermal 
and Inhalation Acute Toxicity Class Methods: Test Procedures and 
Biometric Evaluations for the Globally Harmonized Classification System.  Arch. Toxicol.  77: 243-254.
 
(3) Diener W, Kayser D and Schlede E (1997). The Inhalation Acute-Toxic- 
Class Method; Test Procedures and Biometric Evaluations.  Arch. Toxicol.  
71: 537-549.  
(4) Diener W and Schlede E (1999). Acute Toxic Class Methods: Alternatives 
to LD/LC  50 Tests.  ALTEX  1: 129-134.  
(5) Глава  Б.1 от настоящото  приложение  („Остра  орална  токсичност  — 
метод  клас остра  токсичност “). 
(6) OECD (2009). Report on Biostatistical Performance Assessment of the 
Draft TG 436 Acute Toxic Class Testing Method for Acute Inhalation Toxicity. Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing 
and Assessment № 105, OECD, Paris. Available at: [http://www.oecd.org/ 
env/testguidelines]
 
(7) OECD (2000). Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation. Environmental Health and Safety Monograph 
Series on Testing and Assessment № 19. Available at: [http:// 
www.oecd.org/env/testguidelines]
 
(8) OECD (2009). Guidance Document on Acute Inhalation Toxicity Testing. 
Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and 
Assessment № 39, OECD, Paris. Available at: [http://www.oecd.org/env/ 
testguidelines]  
(9) Регламент  (ЕО) № 1272/2008 на Европейския  парламент  и на Съвета  
от 16 декември  2008 година  относно  класифицирането , етикетирането  
и опаковането  на вещества  и смеси , за изменение  и за отмяна  на 
директиви  67/548/ЕИО  и 1999/45/ ЕО и за изменение  на Регламент  
(ЕО) № 1907/2006 ( ОВ L 353, 31.12.2008 г., стр. 1). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 769
 
(10) Глава  Б.40 от настоящото  приложение  („In vitro кожна  корозия : 
транскутанно  измерване  на електрическото  съпротивление  на 
кожата  (TER)“).  
(11) Глава  Б.40А от настоящото  приложение  („In vitro кожна  корозия : 
изпитване  върху  модел  на човешка  кожа “) 
(12) OECD (2005). In Vitro Membrane Barrier Test Method for Skin Corrosion. 
OECD Guideline for testing of chemicals № 435, OECD, Paris. Available 
at: [http://www.oecd.org/env/testguidelines]  
(13) Phalen RF (2009). Inhalation Studies: Foundations and Techniques. (2  nd 
Edition) Informa Healthcare, New York.  
(14) SOT (1992). Technical Committee of the Inhalation Specialty Section, 
Society of Toxicology (SOT). Recommendations for the Conduct of Acute Inhalation Limit Tests.  Fund. Appl. Toxicol.  18: 321-327.
 
(15) Pauluhn J and Thiel A (2007). A Simple Approach to Validation of 
Directed-Flow Nose-Only Inhalation Chambers. J. Appl. Toxicol. 27: 160-167
 
(16) UN (2007), United Nations Globally Harmonized System of Classification 
and Labelling of Chemicals (GHS), ST/SG/AC.10/30, UN New York and Geneva. Available: [http://www.unece.org/trans/danger/publi/ghs/ghs_wel ­
come_e.html]
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 770
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЕ  
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  на 
настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 771
 
Допълнение  2 
Процедура , която  трябва  да бъде  следвана  за всяка  от началните  
концентрации  за газове  (PPM/4H)  
Общи  бележки  ( 1 ) 
За всяка  начална  концентрация  в това допълнение  са включени  съответните  
схеми  за изпитване , които  очертават  процедурата , която  трябва  да бъде  
следвана . 
Допълнение  2а: Началната  концентрация  е 100 ppm  
Допълнение  2б: Началната  концентрация  е 500 ppm  
Допълнение  2в: Началната  концентрация  е 2 500 ppm  
Допълнение  2г: Началната  концентрация  е 20 000 ppm  
В зависимост  от броя  на умъртвените  по хуманен  начин  или умрели  
животни  процедурата  за изпитване  следва  посочените  стрелки . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 772  
( 1 ) В следващите  таблици  се прави  препратка  към Глобалната  хармонизирана  система  
за класифициране  и етикетиране  на химикалите  (GHS). В рамките  на ЕС 
равностоен  е Регламент  (ЕО) № 1272/2008. В случай  на остра  инхалаторна  токс­  
ичност  по Регламент  (ЕО) № 1272/2008 (9) не се прилага  категория  5.
 Допълнение  2a 
Остра  инхалаторна  токсичност : 
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 100 ppm/4 h за 
газове
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 773
 
Допълнение  2б 
Остра  инхалаторна  токсичност : 
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 500 ppm/4 h за 
газове
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 774
 
Допълнение  2в 
Остра  инхалаторна  токсичност : 
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 2 500 ppm/4 h 
за газове
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 775
 
Допълнение  2г 
Остра  инхалаторна  токсичност : 
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 20 000 ppm/4 h за газове
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 776
 
Допълнение  3 
Процедура , която  трябва  да бъде  следвана  за всяка  от началните  
концентрации  за пари  (MG/L/4H)  
Общи  бележки  ( 1 ) 
За всяка  начална  концентрация  в това допълнение  са включени  съответните  
схеми  за изпитване , които  очертават  процедурата , която  трябва  да бъде  
следвана . 
Допълнение  3а: Началната  концентрация  е 0,5 mg/l  
Допълнение  3б: Началната  концентрация  е 2,0 mg/l  
Допълнение  3в: Началната  концентрация  е 10 mg/l  
Допълнение  3г: Началната  концентрация  е 20 mg/l  
В зависимост  от броя  на умъртвените  по хуманен  начин  или умрели  
животни  процедурата  за изпитване  следва  посочените  стрелки . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 777  
( 1 ) В следващите  таблици  се прави  препратка  към Глобалната  хармонизирана  система  
за класифициране  и етикетиране  на химикалите  (GHS). В рамките  на ЕС 
равностоен  е Регламен  (ЕО) № 1272/2008. В случай  на остра  инхалаторна  токс­  
ичност  по Регламент  (ЕО) № 1272/2008 (9) не се прилага  категория  5.
 Допълнение  3a 
Остра  инхалаторна  токсичност : 
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 0,5 mg/L/4h за пари
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 778
 
Допълнение  3б 
Остра  инхалаторна  токсичност  
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 2 mg/L/4h за пари
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 779
 
Допълнение  3в 
Остра  инхалаторна  токсичност  
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 10 mg/L/4h за пари
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 780
 
Допълнение  3г 
Остра  инхалаторна  токсичност  
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 20 mg/L/4h за пари
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 781
 
Допълнение  4 
Процедура , която  трябва  да бъде  следвана  за всяка  от началните  
концентрации  за аерозоли  (mg/l/4h)  
Общи  бележки  ( 1 ) 
За всяка  начална  концентрация  в това допълнение  са включени  съответните  
схеми  за изпитване , които  очертават  процедурата , която  трябва  да бъде  
следвана . 
Допълнение  4а: Началната  концентрация  е 0,05 mg/l  
Допълнение  4б: Началната  концентрация  е 0,5 mg/l  
Допълнение  4в: Началната  концентрация  е 1 mg/l  
Допълнение  4г: Началната  концентрация  е 5 mg/l  
В зависимост  от броя  на умъртвените  по хуманен  начин  или умрели  
животни  процедурата  за изпитване  следва  посочените  стрелки . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 782  
( 1 ) В следващите  таблици  се прави  препратка  към Глобалната  хармонизирана  система  
за класифициране  и етикетиране  на химикалите  (GHS). В рамките  на ЕС 
равностоен  е Регламен  (ЕО) № 1272/2008. В случай  на остра  инхалаторна  токс­  
ичност  по Регламент  (ЕО) № 1272/2008 (9) не се прилага  категория  5.
 Допълнение  4a 
Остра  инхалаторна  токсичност  
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 0,05 mg/L/4h 
за пари
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 783
 
Допълнение  4б 
Остра  инхалаторна  токсичност  
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 0,5 mg/L/4h за 
аерозоли
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 784
 
Допълнение  4в 
Остра  инхалаторна  токсичност  
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 1 mg/L/4h за 
аерозоли
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 785
 
Допълнение  4г 
Остра  инхалаторна  токсичност  
Процедура  на изпитване  с начална  концентрация  от 5 mg/L/4h за 
аерозоли
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 786
Б.53. ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА НЕВРОТОКСИЧНОСТ  ЗА РАЗВИВАЩИЯ  СЕ 
ОРГАНИЗЪМ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на насоките  за 
изпитване  на ОИСР  (ТG) 426 (2007). В Копенхаген  през юни 1995 г. 
работна  група  на ОИСР  за токсичността  за репродукцията  и за 
развиващия  се организъм  обсъди  необходимостта  от актуализиране  
на съществуващите  указания  на ОИСР  за изпитвания  за токсичност  
за репродукцията  и за развиващия  се организъм , и от разработване  
на нови  насоки  за крайните  точки , които  все още не са 
обхванати  (1). Работната  група  препоръча  да бъде  изготвено  указание  
за изпитване  на невротоксичността  за развиващия  се организъм  въз 
основа  на насоки  на Агенцията  за опазване  на околната  среда  на 
САЩ , които  впоследствие  са били  преразгледани  (2). През  юни 
1996 г. в Копенхаген  беше  проведена  втора  консултационна  среща , 
за предоставяне  на указания  на Секретариата  за изготвяне  на ново  
указание  за изпитване  на невротоксичността  за развиващия  се орга­  
низъм , включително  основните  елементи , например  подробни  данни  
за избор  на животински  видове , период  на дозиране , период  на 
изпитване , крайни  точки , които  трябва  да бъдат  оценени , и критерии  
за оценка  на резултатите . През  1998 г. бяха  публикувани  Насоки  на 
САЩ  за оценка  на риска  за невротоксичността  (3). През  октомври  2000 
г. бяха  проведени  успоредно  консултационна  среща  на експерти  на 
ОИСР  и работен  семинар  на Международния  институт  за науките  за 
живота /Институт  за науката  за оценка  на риска , а през 2005 г. в Токио  
се проведе  консултационна  среща  на експерти . Тези  срещи  бяха  
проведени  за обсъждане  на научните  и техническите  въпроси , 
свързани  с настоящите  насоки  за изпитване , и препоръките  от 
срещите  (4)(5)(6)(7) бяха  взети  предвид  при разработването  на 
настоящия  метод  за изпитване . Допълнителна  информация  относно  
прилагането , тълкуването  и терминологията , използвана  за този 
метод  за изпитване  може  да бъде  намерена  в Ръководство  на ОИСР  
№ 43 относно  „Изпитване  и оценка  на токсичността  за репродукцията “ 
(8) и Ръководство  № 20 относно  „Изпитване  за невротоксичност “ (9).  
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
2. За известен  брой  химикали  се знае, че произвеждат  невротоксични  
ефекти  върху  развиващия  се организъм  при хора  и други  видове  
(10)(11)(12)(13). Определянето  на потенциала  за невротоксичност  за 
развиващия  се организъм  може  да е необходимо , за да се направи  
оценка  на токсичните  характеристики  на даден  химикал . 
Изследванията  за невротоксичност  за развиващия  се организъм  се 
разработват  с оглед  предоставяне  на данни , включително  
характеризиране  на зависимостта  доза-отговор , относно  възможните  
функционални  и морфологични  ефекти  върху  нервната  система  на 
развиващия  се организъм  на потомството , които  могат  да възникнат  
от експозиция  in utero и по време  на ранния  стадий  на живота . 
3. Изпитването  за невротоксичност  за развиващия  се организъм  може  да 
се проведе  като самостоятелно  изследване , да бъде  включено  в 
изследване  на токсичността  за репродукцията  и/или в изследване  за 
невротоксичност  при полово  зрели  организми  (напр . методи  за 
изпитване  Б.34 (14), Б.35 (15), Б.43 (16) или да бъде  добавено  към 
изследване  на токсичността  при пренаталното  развитие  (напр . метод  
за изпитване  Б.31 (17). Когато  изследването  за невротоксичност  за 
развиващия  се организъм  е включено  в друго  изследване  или е 
прибавено  към друго  изследване , е наложително  да се запази  целост­  
ността  и на двата  типа  изследвания . Всички  изпитвания  следва  да 
съответстват  на приложимото  законодателство  или насоки  на правит­  
елствено  равнище  или на равнище  институции  за използването  на 
лабораторни  животни  в научните  изследвания  (напр . 18).  
4. Лабораторията , извършваща  изпитването , следва  да вземе  предвид  
цялата  налична  информация  за изпитвания  химикал  преди  
провеждането  на изследването . Такава  информация  включва  идентич­  
ността  и структурата  на химикала ; неговите  физични  и химични  
свойства ; резултатите  от всякакви  други  in vitro  или in vivo  изпитвания  
за токсичност  на химикала ; токсикологични  данни  за структурно  
свързани  химикали ; и очакваната (ите) употреба (и) на химикала . Тази  
информация  е необходима , за да се удостовери  напълно , че това 
изпитване  е свързано  със защитата  на човешкото  здраве  и ще бъде  
от полза  при избора  на подходяща  начална  доза. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 787
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
5. Изпитваният  химикал  се прилага  на животните  по време  на бремен­  
ността  и кърменето . Майките  при животните  се подлагат  на изпитване  
за оценка  на ефектите  при бременни  и кърмещи  женски  и може  също  
така да бъде  получена  сравнителна  информация  (майки  в сравнение  с 
потомството ). За оценка  на невротоксичността  потомството  се избира  
на случаен  принцип  от котилото . Оценката  се състои  от наблюдения  за 
откриване  на макроскопски  неврологични  и поведенчески  отклонения , 
включително  оценка  на физическото  развитие , поведенческата  
онтогенеза , двигателната  активност , двигателната  и сензорната  
функция , и научаването  и запаметяването ; и оценка  на теглото  на 
мозъка  и невропатологията  през постнаталното  развитие  и след  настъ­  
пването  на полова  зрялост . 
6. Когато  методът  за изпитване  се прилага  като самостоятелно  
изследване , могат  да бъдат  използвани  допълнителни  налични  
животни  във всяка  група  за специфични  невроповеденчески , невропат­  
ологични , неврохимични  или електрофизиологични  процедури , които  
да допълват  данните , получени  от изследванията , препоръчани  от 
настоящия  метод  за изпитване  (16)(19)(20)(21). Допълнителните  
процедури  могат  да бъдат  особено  полезни , когато  при емпиричните  
наблюдения , очакваните  ефекти , или механизъм /начин  на действие  има 
показания  за специфичен  тип невротоксичност . Тези  допълнителни  
процедури  могат  да се използват  при майките , както  и при 
новородените . В допълнение  също  могат  да бъдат  използвани  
процедури  ex vivo  или in vitro , при условие  че тези процедури  не 
изменят  целостността  на процедурите  in vivo . 
ПОДГОТОВКА  ЗА ИЗПИТВАНЕТО  
Избор  на животински  вид 
7. Предпочитаният  вид е плъхът ; ако е необходимо , могат  да се използват  
други  видове . Следва  да се отбележи  обаче , че дните , отнасящи  се за 
периода  на бременността  и постнаталния  период , посочени  в 
настоящия  метод  за изпитване , са специфични  за обичайно  
използваните  породи  плъхове , и следва  да бъде  избран  съпоставим  
период , ако се използва  различен  вид или необичайна  порода . 
Използването  на други  животински  видове  следва  да бъде  обосновано  
въз основа  на токсикологични , фармакокинетични  и/или други  данни . 
Обосновката  следва  да включва  наличието  на специфични  за 
съответния  животински  вид постнатални  невроповеденчески  и невроп­  
атологични  оценки . Ако е имало  предходно  изпитване , в резултат  на 
което  са изразени  опасения , трябва  да бъдат  взети  под внимание  
животинският  вид/породата , породили  опасения . Поради  различните  
характеристики  на признаците  при различните  породи  плъхове , 
следва  да има доказателства , че избраната  за използване  порода  има 
подходящи  плодовитост  и реагиране . Надеждността  и чувствител­  
ността  на други  животински  видове  за откриване  на невротоксичност  
за развиващия  се организъм  следва  да бъдат  документирани . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
8. Температурата  в експерименталното  помещение  с животните  трябва  да 
бъде  22 ± 3 °C. Въпреки  че относителната  влажност  трябва  да е най- 
малко  30 % и за предпочитане  да не превишава  70 %, освен  по време  
на почистване  на помещението , целта  следва  да е 50—60 %. 
Осветлението  трябва  да бъде  изкуствено , като последователността  е 
12 часа светлина , 12 часа тъмнина . Възможно  е също  така да се 
обърне  цикълът  на осветлението  преди  чифтосването  и за продължит­  
елността  на изследването , за да бъдат  извършени  оценките  на функц­  
ионалните  и поведенческите  крайни  точки  през периода  на тъмнина  
(при червено  осветление ), т.е. във времето , през което  животните  
обичайно  са активни  (22). Всякакви  промени  в цикъла  светлина - 
тъмнина  следва  да включват  подходящ  срок  за аклиматизация , който  
да позволява  на животните  да се адаптират  към новия  цикъл . За 
храненето  могат  да се използват  обичайните  лабораторни  хранителни  
режими  с неограничен  достъп  до вода  за пиене . Типът  храна  и вода  
трябва  да се отчитат , като и двете  следва  да бъдат  анализирани  за 
наличието  на замърсители . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 788
 
9. Животните  могат  да се поставят  в индивидуални  клетки  или да се 
разпределят  на малки  групи  от един  и същ пол в общи  клетки . Чифт­  
осването  трябва  да се извърши  в клетки , подходящи  за тази цел. След  
доказване  на копулация , или не по-късно  от 15-ия ден от бремен­  
ността , чифтосаните  животни  трябва  да бъдат  настанени  в 
индивидуални  клетки , подходящи  за раждане  или отглеждане  на 
малките . Клетките  трябва  да бъдат  подредени  по такъв  начин , че 
възможните  ефекти  в резултат  на местоположението  на клетката  да 
бъдат  сведени  до минимум . Когато  наближи  раждането , в клетките  
на бременните  женски  животни  следва  да бъдат  поставени  
подходящи  гнездови  материали . Добре  известно  е, че неправилното  
манипулиране  или стресът  по време  на бременност  могат  да доведат  
до неблагоприятни  последствия , включително  преждевременна  загуба  
на плода  и изменение  в ембрионалното /постнаталното  развитие . За да 
се предотврати  загубата  на плода  в резултат  от фактори , които  не са 
свързани  с третирането , с бременните  животни  следва  да се 
манипулира  внимателно  и следва  да се избягва  стресът  от външни  
фактори , като например  прекомерния  външен  шум . 
Подготовка  на опитните  животни  
10. Трябва  да се използват  здрави  животни , които  са се адаптирали  към 
лабораторните  условия  и не са били  обект  на предходни  експериме­  
нтални  процедури , освен  ако изследването  е включено  в друго  
изследване  (вж. параграф  3). Опитните  животни  трябва  да се опишат  
по отношение  на вид, порода , източник  на доставка , пол, телесно  тегло  
и възраст . Всяко  животно  трябва  да бъде  обозначено  и маркирано  с 
индивидуален  идентификационен  номер . Животните  от всички  опитни  
групи  следва , доколкото  е практически  възможно , да имат  еднакви  
стойности  на телесното  тегло  и възрастта , и следва  да са в рамките  
на нормалния  обхват  за изследвания  вид и порода . Във всяко  ниво  на 
доза следва  да се включат  млади , полово  зрели , нераждали  женски  
животни . Животни  от едни  и същи  родители  не следва  да се 
чифтосват  и следва  да се положат  грижи , за да се гарантира  това. 
Ден 0 от бременността  (ДБ 0) е денят , в който  се наблюдава  
вагинална  запушалка  и/или сперматозоиди . Когато  от даден  
доставчик  се закупуват  животни  с определена  дата на началото  на 
бременността , следва  да се даде  достатъчно  време  за аклиматизация  
(напр . 2—3 дни). Чифтосаните  женски  животни  следва  да бъдат  
разпределени  по непредубеден  начин  по контролни  и опитни  групи  
и, доколкото  е възможно , те трябва  да бъдат  равномерно  разпределени  
между  групите  (препоръчва  се напр . стратифицирана  случайна  
процедура  с оглед  постигане  на равномерно  разпределение  сред  
всички  групи , като например  въз основа  на телесното  тегло ). 
Женските , осеменени  от едно  и също  мъжко  животно , следва  да се 
разпределят  равномерно  в отделните  групи . 
ПРОЦЕДУРА  
Брой  и пол на животните  
11. Всяка  изпитвана  и контролна  група  трябва  да се състои  от достатъчен  
брой  бременни  женски  животни , които  следва  да бъдат  експонирани  на 
изпитвания  химикал , за да се гарантира  получаването  на достатъчно  на 
брой  живо  поколение  за оценка  на невротоксичността . Общо  20 котила  
се препоръчват  за всяко  ниво  на доза. Планирането  на групи  с 
повторение  или отлагане  на дозирането  е разрешено , ако е достигнат  
общият  брой  на котилата  на група  и ако се използват  подходящи  
статистически  модели  за отчитане  на повторенията . 
12. На 4-ия постнатален  ден (ПНД ) или преди  него  (денят  на раждането  е 
ПНД  0), размерът  на всяко  котило  следва  да бъде  коригиран  чрез 
елиминиране  на излишните  новородени  животни  чрез подбор  на 
случаен  принцип , за да се получи  еднаква  големина  на котилото  за 
всички  котила  (23). Големината  на котилото  следва  да не превишава  
средната  големина  на котилото  за използваната  порода  гризачи  
(8—12). Котилото  трябва , доколкото  е възможно , да се състои  от 
равен  брой  мъжки  и женски  новородени  животни . Избирателното  
елиминиране  на новородени  животни , например  въз основа  на 
телесно  тегло , не е уместно . След  стандартизирането  на котилото  
(бракуване ) и преди  по-нататъшното  изпитване  на функционалните  
крайни  точки , отделните  новородени , предвидени  за изпитване  преди  
отбиването  или след  отбиването , следва  да бъдат  идентифицирани  
поотделно , като се използват  всякакви  подходящи  хуманни  методи  за 
идентификация  на новородени  животни  (например  24). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 789
 
Разпределяне  на животни  за функционални  и поведенчески  
изпитвания , измерване  на теглото  на мозъка  и оценка  на невроп­  
атологията  
13. Методът  за изпитване  дава възможност  за различни  подходи  по 
отношение  на разпределянето  на животните , експонирани  in utero  и 
чрез лактация  във функционални  и поведенчески  изпитвания , 
определяне  на половото  съзряване , измерване  на теглото  на мозъка  и 
оценка  на невропатологията  (25). Други  изпитвания  на невроповеде­  
нчески  функции  (напр . социално  поведение ), неврохимия  или невроп­  
атология  могат  да се добавят  според  случая , при условие  че целост­  
ността  на първоначално  изискваните  изпитвания  не е застрашена . 
14. Новородените  животни  се избират  от всяка  група  с определена  доза и 
се разпределят  за оценка  на крайните  точки  на 4-тия ПНД  или след  
него . Подборът  на новородени  животни  трябва  да бъде  извършен  по 
такъв  начин , че доколкото  е възможно , от всяко  котило  двата  пола  във 
всяка  група  с определена  доза да са представени  поравно  при всички  
изпитвания . За изпитване  на двигателната  активност  трябва  да се 
изпитва  една  и съща  двойка  мъжки  и женски  новородени  животни  
във всички  възрасти  преди  отбиването  (вж. параграф  35). За всички  
други  изпитвания , същите  или отделни  двойки  от мъжки  и женски  
животни  могат  да бъдат  разпределени  към различни  поведенчески  
изпитвания . Може  да се наложи  различни  новородени  животни  да 
бъдат  разпределени  към изпитвания  на отбити  в сравнение  с полово  
зрели  животни , свързани  с когнитивната  функция , с цел да се избегне  
невъзможността  за разграничаване  на ефектите  върху  тези измервания  
от възрастта  и предхождащото  обучение  (26)(27). При отбиването  
(ПНД  21) новородените  животни , които  не са били  подбрани  за 
изпитване , могат  да бъдат  отстранени  по хуманен  начин . Всякакви  
изменения  в разпределението  на новородените  животни  следва  да 
бъдат  докладвани . Измерваната  единица  за целите  на статистиката  
следва  да бъде  котилото  (или майката ), а не новороденото  животно . 
15. Съществуват  различни  начини  за разпределяне  на новородени  за 
изследване  преди  отбиването  и след  отбиването , за когнитивни  
изпитвания , изследвания  на патологията  и т.н. (виж фигура  1 за 
общата  схема  и допълнение  1 за примери  на разпределяне ). 
Препоръчваният  минимален  брой  на животните  във всяка  група  с 
определена  доза за изследвания  преди  отбиването  и след  отбиването  
са, както  следва : 
Клинични  наблюдения  и телесно  тегло  Всички  животни  
Подробни  клинични  наблюдения  20/ пол (1/пол/котило ) 
Тегло  на мозъка  (след  фиксиране ) ПНД  
11—22 10/пол (1/котило ) 
Тегло  на мозъка  (нефиксиран ) ~ ПНД  70 10/ пол (1/котило ) 
Невропатология  (фиксиране  чрез 
имерсия  или чрез перфузия ) ПНД  11—22 10/пол (1/котило ) 
Невропатология  (фиксиране  чрез 
перфузия ) ПНД  ~ 70 10/пол (1/котило ) 
Полова  зрялост  20/ пол (1/пол/котило ) 
Други  ориентири  за развитието  (по 
избор ) Всички  животни  
Поведенческа  онтогенеза  20/ пол (1/пол/котило ) 
Двигателна  активност  20/ пол (1/пол/котило ) 
Двигателна  и сензорна  функция  20/ пол (1/пол/котило ) 
Научаване  и запаметяване  10/ пол ( а ) (1/котило ) 
( а ) В зависимост  от чувствителността  на изпитванията  за когнитивната  функция  
следва  да бъде  взето  предвид  изследване  на значително  по-голям  брой  
животни , например  до 1 мъжко  и 1 женско  от котило  (за разпределяне  на 
животните  вж. Допълнение  1) (допълнителни  указания  относно  размера  на 
извадката  са предоставени  в Ръководство  № 43 на ОИСР  (8). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 790
 
Дозиране  
16. Следва  да се приложат  най-малко  три нива  на доза и да се използва  
паралелна  контролна  група . Дозите  следва  да бъдат  избрани  в такова  
съотношение , че с нарастването  им да се наблюдава  ясно  изразено  
засилване  на токсичните  ефекти . Освен  ограниченията  от физично  и 
химично  естество , или такива  в резултат  от биологични  свойства  на 
химикала , най-високото  ниво  на доза трябва  да се избира  с цел да 
предизвика  известна  токсичност  при майката  (напр . клинични  
признаци , намаляване  на нарастването  на телесното  тегло  (не повече  
от 10 %) и/или доказване  на ограничена  от дозата  токсичност  в 
прицелен  орган ). Високата  доза може  да бъде  ограничена  до 1 000 
mg на kg телесно  тегло  дневно , с някои  изключения . Например , 
очакваната  експозиция  на хора  може  да покаже  необходимост  да се 
използва  по-високо  ниво  на доза. Като  алтернатива  следва  да се 
провеждат  пилотни  изследвания  или предварителни  изследвания  за 
определяне  на обхвата  за определянето  на най-високата  доза, която  
да се използва  за постигане  на минимална  степен  на токсичност  при 
майката . Ако в стандартно  изследване  за токсичност  за развиващия  се 
организъм  или в пилотно  изследване  е доказано , че изпитваният  
химикал  е токсичен  за развиващия  се организъм , най-високата  доза 
трябва  да бъде  максималната  доза, която  не предизвиква  прекомерна  
токсичност  за поколението , или смъртност  in utero , или сред  
новородените , или малформации , достатъчни , за да се изключи  
съдържателна  оценка  на невротоксичността . Най-ниската  доза следва  
да има за цел да не предизвиква  никакви  прояви  на токсичност , включ­  
ително  невротоксичност , за майката  или развиващия  се организъм . 
Следва  да се подбират  постепенно  намаляващи  нива  на доза с оглед  
установяване  на всеки  един  свързан  с дозата  отговор  и на нивото  без 
наблюдаван  неблагоприятен  ефект  (NOAEL), или дози  в близост  до 
границата  на откриване , които  да позволят  определянето  на еталонна  
доза. В повечето  случаи  най-подходящо  е да се използва  двукратно  до 
четирикратно  намаление  на всяка  доза спрямо  най-близката  по-висока  
доза, като включването  на допълнителна  четвърта  група  с определена  
доза често  е за предпочитане  пред  използването  на твърде  големи  
интервали  между  дозите  (напр . повече  от 10 пъти ). 
17. Нивата  на дозите  следва  да се подберат , като се вземат  под внимание  
всички  съществуващи  токсикологични  данни , както  и допълнителна  
информация  за метаболизма  и токсикокинетиката  на изпитвания  
химикал  или на подобни  материали . Тази  информация  може  да се 
използва  също  и при обосновката  на схемата  на дозиране . Директното  
дозиране  на новородени  животни  трябва  да се разглежда  в светлината  
на информацията  за експозицията  и фармакокинетиката  (28)(29). Преди  
провеждането  на изследвания  за директно  дозиране  следва  внимателно  
да се разгледат  предимствата  и недостатъците  (30).  
18. Паралелната  контролна  група  следва  да бъде  с фиктивно  третиране  или 
контролна  група  на носител  в случаите , когато  за въвеждането  на 
изпитвания  химикал  се използва  носител . За всички  животни  
обичайно  се прилага  един  и същ обем  от изпитвания  химикал  или от 
носителя , в съответствие  с телесното  тегло . Когато  за улесняване  на 
дозирането  се използва  носител  или друга  добавка , следва  да се вземат  
предвид  следните  характеристики : ефекти  върху  абсорбцията , 
разпределението , метаболизма  или задържането  на изпитвания  
химикал ; ефекти  върху  химичните  свойства  на изпитвания  химикал , 
които  могат  да изменят  токсикологичните  му характеристики ; и 
ефекти  върху  консумирането  на храна  или вода , или хранителния  
статус  на животните . Носителят  следва  да не предизвиква  ефекти , 
които  биха  могли  да попречат  на тълкуването  на изследването , също  
така следва  да не е токсичен  от невроповеденческа  гледна  точка  и да 
няма  ефекти  върху  репродукцията  или развиващия  се организъм . За 
нови  носители  в допълнение  към контролна  група  на носител  следва  
да бъде  включена  група  с фиктивно  третиране . С животните  в 
контролната (ите) група (и) следва  да се борави  по същия  начин , както  
с животните  от групата  за изпитване . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 791
 
Прилагане  на дозите  
19. Изпитваният  химикал  или носителят  следва  да бъдат  прилагани  по 
пътя , който  в най-голяма  степен  съответства  на потенциалната  
експозиция  на човека , и въз основа  на наличната  информация  за мета­  
болизма  и разпределението  в изпитваните  животни . Пътят  на 
прилагане  обичайно  е орален  (напр . чрез сонда , чрез храна , чрез 
питейна  вода ), но могат  да се използват  други  пътища  (например  
чрез кожата , чрез вдишване ) в зависимост  от характеристиките  и 
очакваните  или познатите  пътища  на експозиция  на човека  (допълн­  
ителни  насоки  са представени  в Ръководство  № 43 (8). Необходимо  е 
да се даде  обосновка  за избрания  път на прилагане . Изпитваният  
химикал  следва  да се прилага  приблизително  по същото  време  всеки  
ден. 
20. Дозата , прилагана  за всяко  животно , се определя  най-често  въз основа  
на последното  измерване  на индивидуалното  телесно  тегло . Въпреки  
това трябва  да се подхожда  предпазливо , когато  се определят  дозите  
през последната  третина  от бременността . Ако е забелязана  прекалена  
токсичност  при третираните  майки , тези животни  следва  да бъдат  
умъртвени  по хуманен  начин . 
21. Изпитваният  химикал  или носителят  следва , като минимум , да се 
прилагат  ежедневно  при чифтосаните  женски  животни  от времето  на 
имплантация  (ДБ 6) по време  на кърменето  (ПНД  21), така че 
новородените  да бъдат  експонирани  на въздействието  на изпитвания  
химикал  в периодите  на пренаталното  и постнаталното  неврологично  
развитие . Възрастта , на която  да започне  дозирането , и продължит­  
елността  и честотата  на дозиране  могат  да бъдат  коригирани , ако 
има доказателства  в подкрепа  на постановка  на изпитването , която  
съответства  в по-голяма  степен  на експозицията  на човека . Продължит­  
елността  на дозирането  следва  да се коригира  за други  видове , за да се 
гарантира  експозиция  през всички  ранни  периоди  на развитието  на 
мозъка  (т.е. еквивалентна  на пренаталното  и ранното  постнатално  
развитие  на човешкия  мозък ). Дозирането  може  да започне  от датата  
на започване  на бременността  (ДБ 0), въпреки  че трябва  да се обърне  
внимание  на потенциала  на изпитвания  химикал  да предизвиква  
предимплантационна  загуба . При прилагане , започващо  от ДБ 6, този 
риск  би бил избягнат , но етапите  на развиващия  се организъм  между  
ДБ 0 и ДБ 6 не биха  били  третирани . Когато  дадена  лаборатория  
закупува  животни  с определена  дата на чифтосването , се счита  за 
непрактично  дозирането  да започва  в ДБ 0, и по този начин  ДБ 6 би 
бил уместен  ден за започването . Лабораторията , провеждаща  
изпитването , следва  да определи  схемата  на третиране  в съответствие  
с относимата  информация  за ефектите  на изпитвания  химикал , с 
предходния  опит  и с логистични  съображения ; това може  да включва  
разширяване  на периода  на дозирането  след  отбиването . Дозиране  не 
следва  да се прилага  в деня  на раждането  за тези животни , при които  
раждането  на цялото  потомство  още не е приключило . Като  цяло  се 
приема , че експозицията  на новородените  ще се извърши  чрез 
майчиното  мляко ; въпреки  това обаче  трябва  да бъде  взето  предвид  
директно  дозиране  в тези случаи , в които  не е доказана  продължителна  
експозиция  на потомството . Доказателства  за непрекъсната  експозиция  
могат  да бъдат  изведени  например  от фармакокинетична  информация , 
токсичност  за потомството  или промени  в биомаркерите  (28).  
НАБЛЮДЕНИЯ  
Наблюдения  на майки  
22. Всички  майки  трябва  да бъдат  внимателно  наблюдавани  най-малко  
веднъж  на ден, във връзка  с тяхното  здравословно  състояние , включ­  
ително  за заболеваемост  и смъртност . 
23. По време  на периодите  на третиране  и наблюдение  следва  периодично  
да се извършват  по-подробни  клинични  наблюдения  (най-малко  два 
пъти  при дозиране  през периода  на бременността  и два пъти  през 
периода  на кърменето ) като се използват  най-малко  десет  майки  за 
всяко  ниво  на доза. Животните  следва  да се наблюдават  извън  
клетката  от обучени  техници , които  не са запознати  с третирането  на 
животните , като се използват  стандартни  процедури  за свеждане  до 
минимум  на отклоненията , свързани  със стреса  на животните  и с набл­  
юдателите , и за максимална  надеждност  при резултатите  между  разл­  
ичните  наблюдатели . Когато  е възможно , е препоръчително  набл­  
юденията  в дадено  изследване  да се извършват  от един  и същ специ­  
алист . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 792
 
24. Наличието  на наблюдавани  признаци  трябва  да се записва . Когато  е 
възможно , големината  (размерът ) на наблюдаваните  признаци  също  
трябва  да бъде  записана . Клиничните  наблюдения  трябва  да 
включват  изменения  в кожа , козина , очи, лигавици , поява  на 
секреция  и автономна  дейност  (напр . лакримация , пилоерекция , 
размер  на зениците , необичайни  респираторни  модели  и/или дишане  
през устата  и някакви  необичайни  признаци  на уриниране  и дефек­  
ация ), но без да се ограничават  до тях. 
25. Всякакви  необичайни  отговори , свързани  с положение  на тялото , ниво  
на активност  (напр . понижено  или повишено  проучване  на 
стандартната  площ ) и координация  на движенията , трябва  също  да 
бъдат  отбелязани . Следва  да бъдат  записвани  промените  в походката  
(напр . клатушкаща  се „патешка “ походка , атаксия ), стойката  (напр . 
прегърбване ) и реактивността  при боравене , поставяне  или други  
стимули  на околната  среда , както  и наличието  на клонични  или 
тонични  движения , конвулсии , тремори , стереотипно  (например  прек­  
омерно  поддържане  на външния  вид, необичайни  движения  на главата , 
повтарящо  се обикаляне  в кръг ), необичайно  (например  хапане  или 
прекомерно  облизване , самоосакатяване , вървене  назад , издаване  на 
звуци ) или агресивно  поведение . 
26. Признаците  за токсичност  следва  да се записват , включително  ден на 
поява , по кое време  през деня , степен  и продължителност . 
27. Животните  следва  да бъдат  теглени  по време  на дозиране  поне  веднъж  
седмично  в хода  на изследването , в деня  на раждането  или близо  до 
него , както  и в ПНД  21 (отбиване ). При проучвания  със сонда  майките  
следва  да бъдат  теглени  поне  два пъти  седмично . Дозите  следва  да 
бъдат  коригирани  по време  на всяко  измерване  на телесното  тегло , 
както  е уместно . Консумацията  на храна  трябва  да се измерва  
веднъж  седмично , като минимум  по време  на бременността  и 
кърменето . Консумацията  на вода  трябва  да се измерва  поне  един  
път седмично , ако експозицията  е чрез осигуряването  на вода . 
Наблюдения  на потомството  
28. Всички  животни  от потомството  трябва  да бъдат  внимателно  набл­  
юдавани  най-малко  ежедневно  за признаци  на токсичност  и за забо­  
леваемост  и смъртност . 
29. По време  на периодите  на третиране  и наблюдение  следва  периодично  
да се извършват  по-подробни  клинични  наблюдения  на потомството . 
Потомството  (най-малко  едно  новородено  от пол от котило ) следва  да 
се наблюдава  от обучени  техници , които  не са запознати  с третирането  
на животните , като се използват  стандартни  процедури  за свеждане  до 
минимум  на отклоненията , и за максимална  надеждност  при 
резултатите  между  различните  наблюдатели . Когато  е възможно , е 
препоръчително  наблюденията  да се извършват  от един  и същ 
техник . Като  минимум , крайните  точки , описани  в параграфи  24 и 
25, следва  да бъдат  подложени  на мониторинг , както  е подходящо  за 
наблюдавания  етап на развитие  на развиващия  се организъм . 
30. Всички  признаци  за токсичност  в потомството  следва  да се записват , 
включително  ден на поява , по кое време  през деня , степен  и продълж­  
ителност . 
Физически  ориентири  и ориентири  за развиващия  се организъм  
31. Промените  в ориентирите  за развитието  преди  отбиването  (например  
разтварянето  на ушната  мида , отварянето  на очите , поникването  на 
резците ) са тясно  свързани  с телесното  тегло  (30)(31). Телесното  
тегло  може  да бъде  най-добрият  показател  за физическото  развитие . 
Следователно  измерването  на ориентирите  за развитието  се препоръчва  
само  когато  преди  това е доказано , че тези крайни  точки  ще предо­  
ставят  допълнителна  информация . Графикът  за оценката  на тези 
параметри  е посочен  в Таблица  1. В зависимост  от очакваните  
ефекти  и резултатите  от първоначалните  измервания , може  да е 
препоръчително  да се добавят  допълнителни  времеви  точки  или да 
се извършат  измервания  при други  етапи  на развитие . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 793
 
32. Препоръчително  е при оценката  на физическото  развитие  да се 
използва  възрастта  след  половия  акт вместо  постнаталната  възраст  
(33). Ако новородените  се изпитват  в деня  на отбиването , препоръчва  
се това изпитване  да се извърши  преди  действителното  отбиване , за да 
се избегне  водещият  до невъзможност  за разграничаване  ефект  от 
стреса , свързан  с отбиването . В допълнение  към това изпитването  на 
новородените  животни  след  отбиването  не следва  да се провежда  през 
двата  дни след  отбиването . 
Таблица  1 
График  за оценката  на физическите  ориентири , ориентирите  за развиващия  се 
организъм  и функционалните /поведенческите  крайни  точки  ( a ) 
Възрастови  
периоди  
Крайни  точки  Преди  отбиване  ( b ) Млади  ( b ) Млади  полово  зрели  ( b ) 
Физически  ориентири  и ориентири  за развиващия  се организъм  
Наблюдения  на 
телесното  тегло  и 
Клинични  набл­  
юдения  седмично  ( c ) най-малко  веднъж  
на всеки  две 
седмици  най-малко  веднъж  
на всеки  две 
седмици  
Тегло  на мозъка  ПНД  22 (  d ) при умъртвяване  
Невропатология  ПНД  22 (  d ) при умъртвяване  
Полова  зрялост  — според  случая  — 
Други  ориентири  за 
развитието  ( e ) според  случая  — —  
Функционални /поведенчески  крайни  точки  
Поведенческа  
онтогенеза  Най-малко  две 
измервания  
Двигателна  активност  
(включително  
привикване ) 1-3 пъти  ( f ) — веднъж  
Двигателна  и 
сензорна  функция  — веднъж  веднъж  
Научаване  и запам­  
етяване  — веднъж  веднъж  
( a ) В тази таблица  се посочва  минималният  брой  пъти  на извършване  на измерванията . В зависимост  
от очакваните  ефекти  и резултатите  от първоначалните  измервания , може  да е препоръчително  да 
се добавят  допълнителни  времеви  точки  (напр . възрастни  животни ) или да се извършат  
измервания  при други  етапи  на развитие  на развиващия  се организъм . 
( b ) Препоръчва  се новородените  животни  да не се изпитват  по време  на двата  дни след  отбиването  
им (вж. параграф  32). Препоръчваните  възрасти  за изпитване  на млади  животни  са: научаване  и 
запаметяване  = ПНД  25 ± 2; двигателна  и сензорна  функция  = ПНД  25 ± 2. Препоръчваните  
възрасти  за изпитване  на млади  полово  зрели  животни  са ПНД  60—70. 
( c ) Телесните  тегла  трябва  да се измерват  поне  два пъти  седмично  когато  директно  се дозират  
новородени  животни  за коригиране  на дозите  във време  на бързо  наддаване  на телесно  тегло . 
( d ) Теглото  на мозъка  и невропатологията  могат  да бъдат  оценени  на някакъв  по-ранен  етап (напр . 
ПНД  11), ако е целесъобразно  (вж. параграф  39). 
( e ) Други  ориентири  за развиващия  се организъм  в допълнение  към телесното  тегло  (напр . отваряне  
на очите ) следва  да се записват , когато  е подходящо  (виж параграф  31). 
( f ) Вж. параграф  35. 
33. Живите  новородени  животни  трябва  да бъдат  преброени  и полът  им да 
бъде  определен , напр . чрез визуална  проверка  или чрез измерване  на 
разстоянието  между  ануса  и половите  органи  (34)(35), и всяко  
новородено  животно  в рамките  на дадено  котило  трябва  да бъде  прет­  
еглено  отделно  при раждане  или скоро  след това, поне  веднъж  седмично  
по време  на кърменето  и най-малко  веднъж  на всеки  две седмици  след 
това. При оценката  на половото  съзряване  поне  за един  мъжки  и един  
женски  индивид  от котило  трябва  да се определят  възрастта  и телесно  
тегло  на животното  при настъпване  на отворено  състояние  на вагината  
(36) или на отделяне  на препуциума  (37).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 794
 
Поведенческа  онтогенеза  
34. Онтогенезата  на избрани  поведения  следва  да се измерва  при най- 
малко  едно  новородено  от всеки  пол от котило  по време  на 
подходящия  възрастов  период , като бъдат  използвани  едни  и същи  
новородени  животни  през всички  дни на изпитване  за всички  
оценявани  поведения . Дните  на измерване  трябва  да са разпределени  
равномерно  през този период , за да се определи  или нормалната , или 
свързаната  с третирането  промяна  в онтогенезата  на това поведение  
(38). Ето например  някои  от поведенията , чиято  онтогенеза  би могла  
да бъде  оценена : рефлекс  за пазене  на равновесие , отрицателен  
геотаксис  и двигателна  активност  (38)(39)(40).  
Двигателна  активност  
35. Двигателната  активност  трябва  да бъде  наблюдавана  (41)(42) 
(43)(44)(45) по време  на периода  преди  отбиването  и периода  на 
полова  зрялост . За изпитване  по време  на отбиването , вж. параграф  
32. Провеждането  на изпитването  следва  да бъде  достатъчно  дълго , за 
да се докаже  привикване  по време  на провеждането  за нетретирани  
контроли . Използването  на двигателната  активност  за оценка  на 
поведенческата  онтогенеза  силно  се препоръчва . Ако се използва  за 
изпитване  на поведенческата  онтогенеза , тогава  при изпитването  
следва  да се използват  едни  и същи  животни  за всички  провеждани  
изпитвания  преди  отбиването . Изпитванията  трябва  да бъдат  дост­  
атъчно  чести , за да се оцени  онтогенезата  на привикването  по време  
на провеждането  (44). Това  може  да изисква  три или повече  периоди  
от време  преди  и включително  в деня  на отбиване  (напр . ПНД  13, 17, 
21). Изпитването  на същите  животни , или животни  от едно  котило , 
следва  също  така да се провежда  в полово  зряла  възраст  в близост  
до прекратяването  на проучването  (напр . ПНД  60—70). При необ­  
ходимост  може  да се извършва  изпитване  в допълнителни  дни. Двигат­  
елната  активност  трябва  да се наблюдава  посредством  автоматичен  
апарат  за записване  на активността , способен  да улови  и пониженията , 
и повишенията  в активността  (т.е. базовата  активност , измервана  от 
апарата , не следва  да бъде  с толкова  ниска  стойност , че да изключва  
възможността  за откриване  на пониженията , нито  с толкова  висока , че 
да изключва  откриване  на повишенията  на активността ). Всяко  
устройство  следва  да бъде  изпитвано  чрез стандартни  процедури , за 
да се гарантира , доколкото  е възможно , надеждността  на работата  при 
различните  уреди  и в различните  дни. Доколкото  е възможно , 
третираните  групи  трябва  да бъдат  балансирани  между  устройствата . 
Всяко  животно  трябва  да се изпитва  поотделно . Групите  за третиране  
следва  да бъдат  балансирани  по време  на изпитването  по такъв  начин , 
че да се избегне  невъзможност  за разграничаване  от циркадните  ритми  
на активност . Следва  да се положат  усилия , за да се гарантира , че 
колебанията  в условията  на изпитването  са минимални  и не са сист­  
ематически  свързани  с третирането . Сред  променливите , които  могат  
да засегнат  редица  измервания , свързани  с поведението , включително  
двигателната  активност , са равнището  на звука , размерът  и формата  на 
изпитвателната  клетка , температурата , относителната  влажност , 
условията  на осветление , миризмите , използването  на обитаваната  от 
животното  клетка , или на нова  изпитвателна  клетка , и свързаните  с 
околната  среда  причини  за разсейване . 
Двигателна  и сензорна  функция  
36. Двигателната  и сензорна  функция  следва  да бъде  подробно  изследвана  
най-малко  веднъж  за млади  животни  и веднъж  за млади  полово  зрели  
животни  (напр . ПНД  60—70). За изпитване  по време  на отбиването , 
вж. параграф  32. Следва  да се извършват  достатъчно  изпитвания , за да 
се гарантира  адекватно  количествено  вземане  на проби  на сензорни  
модалности  (напр . сомато -сензорни , вестибуларни ) и двигателни  
функции  (напр . сила , координация ). Няколко  примера  за изпитвания  
на двигателната  и сензорна  функция  са реакцията  на екстензор  на 
натиск  (46), рефлексът  за пазене  на равновесие , привикването  към 
интензивни  слухови  стимули  (47)(48)(40)(49)(50)(51)(52)(53)(54) и 
евокираните  потенциали  (55).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 795
 
Изпитвания  за научаване  и запаметяване  
37. Следва  да се проведе  изпитване  за научаване  и запаметяване  — след  
отбиването  (напр . 25 ± 2 дни) и при млади  полово  зрели  животни  
(ПНД  60 и по-възрастни ). За изпитване  по време  на отбиването , вж. 
параграф  32. Същото (ите) или отделно (и) изпитване (ия) може  да се 
използва (т) при тези два етапа  на развитие . Разрешена  е известна  
гъвкавост  при избора  на изпитването (ията) за научаване  и запам­  
етяване  при отбити  и полово  зрели  плъхове . Въпреки  това, изпитва­  
нето (ята), трябва  да бъде (ат) проектирано (и) по такъв  начин , че да 
изпълнява (т) два критерия . Първо , научаването  трябва  да се оценява  
или като промяна  при няколко  повтарящи  се опита  или сесии  за 
научаване , или в изпитвания , които  включват  един  опит , спрямо  
състояние , при което  се контролират  неасоциативните  ефекти  от 
обучението . Второ , изпитването (ята), следва  да включва (т) някои  
мерки  за запаметяване  (краткосрочно  или дългосрочно ) в допълнение  
към първоначалното  научаване  (придобиване ), но тази мярка  за запам­  
етяване  не може  да бъде  докладвана  при липса  на измерване  на 
придобиването , получено  от същото  изпитване . Ако изпитването (ията) 
за научаване  и запаметяване  разкрие (ят) ефект  на изпитвания  химикал , 
могат  да бъдат  предвидени  допълнителни  изпитвания , за да се 
изключат  алтернативни  тълкувания , основаващи  се на промени  в 
сетивния , мотивационния  и/или двигателния  капацитети . В допълнение  
към посочените  по-горе два критерия  се препоръчва  изпитването  за 
научаване  и запаметяване  да се избира  въз основа  на доказаната  му 
чувствителност  към изследвания  клас химикал , ако е налична  такава  
информация  в литературата . При липса  на такава  информация  примери  
за изпитвания , които  биха  могли  да бъдат  извършени  при спазването  
на горепосочените  критерии , включват : пасивно  избягване  (43)(56)(57), 
определяне  на обект  след  закъснение  за полово  зрели  плъхове  (58) и за 
плъхове  преди  отбиване  (59), кондициониране  на обонянието  (43)(60), 
воден  лабиринт  на Morris (61)(62)(63), лабиринт  на Biеl или Cincinnati 
(64)(65), лабиринт  с радиално  рамо  (66) Т-образен  лабиринт  (43) 
придобиване  и поддържане  на програмирано  поведение  (26)(67)(68). 
Допълнителни  изпитвания  са описани  в литературата  за отбити  
(26)(27) и полово  зрели  плъхове  (19)(20).  
Оглед  при аутопсия  
38. Животните  майки  могат  да бъдат  подложени  на евтаназия  след  
отбиването  на потомството . 
39. Невропатологичната  оценка  на потомството  се провежда , като се 
използва  тъкани  от животни , умъртвени  по хуманен  начин  в ПНД  22 
или на по-ранен  етап между  ПНД  11 и ПНД  22, както  и при 
прекратяване  на проучването . За потомството , умъртвено  през ПНД  
22, следва  да бъдат  оценени  мозъчни  тъкани ; за животни , умъртвени  
при прекратяване  на изпитването , трябва  да бъдат  оценени  тъкани  
както  от централната  нервна  система  (ЦНС ), така и от периферната  
нервна  система  (ПНС ). Животни , умъртвени  през ПНД  22 или преди  
това, могат  да бъдат  фиксирани  или чрез имерсия , или и чрез 
перфузия . Животни , умъртвени  при прекратяване  на проучването , 
следва  да бъдат  фиксирани  чрез перфузия . Всички  аспекти  от подг­  
отовката  на проби  от тъкани , от перфузията  на животни  през 
дисекцията  на проби  от тъкани , обработката  на тъкани  и оцветяването  
на предметните  стъкла , трябва  да са по план , балансиран  така, че всяка  
партида  да съдържа  представителни  извадки  от всяка  група  с 
определена  доза. Допълнителни  насоки  относно  невропатологията  
могат  да бъдат  намерени  в Ръководство  № 20 на ОИСР  (9), виж 
също  (103).  
Обработка  на проби  от тъкани  
40. Всички  макроскопски  аномалии , видими  по време  на аутопсията , 
следва  да се отбелязват . Взетите  проби  от тъкани  следва  да са предста­  
вителни  за всички  основни  области  на нервната  система . Тъканните  
проби  трябва  да бъдат  задържани  в подходящ  фиксатор  и обработвани  
съгласно  стандартизирани  публикувани  хистологични  протоколи  
(69)(70)(71)(103). Включването  в парафин  е приемливо  за тъкани  от ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 796
 
ЦНС  и ПНС , но използването  на осмий  след  фиксирането , заедно  с 
включване  в епоксидна  смола , може  да бъде  подходящо  когато  се 
изисква  по-висока  разделителна  способност  (например  за периферните  
нерви , когато  има съмнение  за наличието  на периферна  невропатия  
и/или за морфометричен  анализ  на периферните  нерви ). Мозъчната  
тъкан , вземана  за морфометричен  анализ , следва  да бъде  включена  в 
подходяща  среда  при всички  нива  на доза и по едно  и също  време , за 
да бъдат  избегнати  артефакти  на свиване , които  могат  да бъдат  
свързани  с продължително  съхранение  във фиксатор  (6). 
Невропатологично  изследване  
41. Целите  на качественото  изследване  са: 
i) идентифициране  на области  в нервната  система , доказващи  невроп­  
атологични  изменения ; 
ii) идентифициране  на типове  невропатологични  изменения  в резултат  
от експозиция  на изпитвания  химикал ; както  и 
iii) определяне  на обхвата  на силата  на невропатологичните  
изменения . 
Представителни  хистологични  срезове  от тъканните  проби  трябва  да 
бъдат  изследвани  микроскопски  от подходящо  обучен  патолог  за 
доказване  на невропатологични  изменения . Всички  невропатологични  
изменения  трябва  да бъдат  определени  със субективна  степен , 
показваща  силата  им. Оцветяване  с хематоксилин  и еозин  може  да е 
достатъчно  за оценката  на срезове  от мозък  за животни , умъртвени  по 
хуманен  начин  през ПНД  22 или по-рано . За срезове  от тъкани  от ЦНС  
и ПНС  от животни , умъртвени  при прекратяване  на изследването  
обаче  се препоръчва  оцветяване  за миелин  (напр . luxol fast blue/cresyl 
violet) и сребърно  оцветяване  (напр . оцветяване  по Билшовски  или по 
Бодиан ). В зависимост  от професионалната  преценка  на патолога  и от 
вида  на наблюдаваните  изменения , може  да се счете  за подходящо  
друго  оцветяване  за идентифициране  и характеризиране  на конкретни  
типове  изменения  (напр . глиален  фибриларен  кисел  протеин  (GFAP) 
или хистохимия  на лецитин  за оценка  на глиални  и микроглиални  
изменения  (72), Fluoro-jade за откриване  на некроза  (73)(74), или 
сребърно  оцветяване , специфично  за неврална  дегенерация  (75)).  
42. Следва  да бъде  извършена  морфометрична  (количествена ) оценка , тъй 
като тези данни  могат  да допринесат  за откриване  на свързан  с 
третирането  ефект  и са полезни  при тълкуването  на свързани  с 
третирането  разлики  в теглото  или морфологията  на мозъка  (76)(77). 
Проби  от нервна  тъкан  трябва  да се вземат  и подготвят , за да се даде  
възможност  за извършване  на морфометрична  оценка . Морфом­  
етричните  оценки  могат  да включват  например  линейни  измервания  
или измерване  на площ  на специфични  области  от мозъка  (78). 
Линейните  измервания  и измерването  на площ  изискват  използване  
на хомоложни  срезове , внимателно  подбрани  въз основа  на надеждни  
микроскопски  ориентири  (6). Може  да се използва  стереология  за уста­  
новяване  на свързани  с третирането  ефекти  върху  параметри  като обем  
или брой  на клетките  за специфични  невроанатомични  области  
(79)(80)(81)(82)(83)(84).  
43. Мозъкът  трябва  да бъде  изследван  за всякакви  доказателства  за 
свързани  с третирането  невропатологични  изменения , като следва  да 
бъдат  взети  подходящи  проби  от всички  основни  области  на мозъка  
(напр . обонятелни  луковици , мозъчна  кора , хипокамп , базални  ганглии , 
таламус , хипоталамус , среден  мозък  (тектум , тегментум  и 
малкомозъчни  крачета ), мост , продълговат  мозък , малък  мозък ), за да 
се осигури  задълбочено  проучване . Важно  е срезовете  за всички  
животни  да се вземат  на едно  и също  ниво . При умъртвени  по 
хуманен  начин  при прекратяване  на изследването  полово  зрели  
животни  следва  да се пробовземат  представителни  срезове  от 
гръбначния  мозък  и ПНС . Изследваните  области  следва  да включват  
окото  с оптичния  нерв  и ретината , гръбначния  мозък  при шийното  и 
поясното  надебеление , дорзалните  и вентралните  коренови  влакна , 
проксималния  седалищен  нерв , проксималния  тибиален  нерв  (при 
коляното ) и тибиалното  нервно  разклонение  на мускулите  на 
прасеца . Срезовете  от гръбначния  мозък  и периферните  нерви  следва  
да включват  както  напречни , така и надлъжни  срезове . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 797
 
44. Невропатологичната  оценка  следва  да включва  изследване  за 
показания  за свързани  с развиващия  се организъм  увреждания  на 
нервната  система  (6)(85)(86)(87)(88)(89), в допълнение  към клетъчните  
изменения  (напр . невронална  вакуолизация , дегенерация , некроза ) и 
изменения  в тъканите  (напр . глиоза , левкоцитна  инфилтрация , 
образуване  на кисти ). В това отношение  е важно  свързаните  с 
третирането  ефекти  да бъдат  разграничени  от нормалните  събития , 
свързани  с развиващия  се организъм , за които  е известно , че се 
появяват  на етапа  на развитие , съответстващ  на времето  на 
умъртвяването  (90). Примери  за важни  изменения , показателни  за 
инсулт , свързан  с развиващия  се организъм , включват , но не се 
ограничават  до: 
— изменения  в макроскопския  размер  или формата  на обонятелните  
луковици , главния  мозък  или малкия  мозък ; 
— изменения  в относителния  размер  на различни  области  на мозъка , 
включително  намаляване  или увеличаване  на размера  на областите  
вследствие  на загуба  или устойчивост  на обичайно  преходни  
популации  от клетки  или проекции  на аксони  (напр . външен  
зародишен  пласт  на малкия  мозък , мазолесто  тяло ); 
— изменения  в пролиферацията , миграцията  и диференциацията , 
показание  за което  са области  с необикновено  силна  апоптоза  
или некроза , клъстери  или разпръснати  популации  на ектопични , 
дезориентирани  или деформирани  неврони  или изменения  в относ­  
ителния  размер  на отделните  пластове  на коровите  структури ; 
— изменения  в моделите  на миелинизация , включително  цялостно  
намаляване  на размера  или изменено  оцветяване  на 
миелинизираните  структури ; 
— доказателства  за хидроцефалия , по-специално  разширяване  на 
вентрикулите , стеноза  на водопровода  на средния  мозък  и 
изтъняване  на полукълбата  на големия  мозък . 
Анализ  на зависимостта  доза -отговор  за невропатологични  
изменения  
45. Препоръчва  се следната  поетапна  процедура  за качествени  и колич­  
ествени  невропатологични  анализи . Първо , срезове  от групата  с 
висока  доза се сравняват  с тези от контролната  група . Ако не се 
открива  доказателство  за невропатологични  изменения  в животните  
от групата  с висока  доза, не се изисква  по-нататъшен  анализ . Ако се 
открие  доказателство  за невропатологични  изменения  в групата  с 
висока  доза, тогава  се изследват  животните  от групите  със средна  и 
ниска  доза. Ако групата  с висока  доза е умъртвена  поради  смърт  или 
друга  невъзможна  за разграничаване  токсичност , групите  с висока  и 
със средна  доза трябва  да се анализират  за невропатологични  
изменения . Ако има показания  за невротоксичност  в групите  с по- 
ниски  дози , в тези групи  трябва  да се извърши  невропатологичен  
анализ . Ако при качественото  или количественото  изследване  бъдат  
открити  свързани  с третирането  невропатологични  изменения , завис­  
имостта  на появата , честотата  и степента  на силата  на уврежданията  
или на морфометричните  изменения  от дозата  следва  да се определи  
въз основа  на оценка  на всички  животни  от всички  групи  с определена  
доза. Всички  области  на мозъка , които  показват  някакво  доказателство  
за невропатологично  изменение , следва  да бъдат  включени  в тази 
оценка . За всеки  тип увреждане  следва  да бъдат  описани  характерист­  
иките , използвани  за определянето  на всяка  степен  на сила , като се 
посочват  елементите , използвани  за разграничаване  на всяка  степен . 
Честотата  на всеки  тип увреждане  и неговата  степен  на сила  следва  
да бъдат  записани  и следва  да бъде  направен  статистически  анализ  с 
цел оценка  на естеството  на зависимостта  доза-отговор . Препоръчва  се 
използването  на кодирани  предметни  стъкла  (91).  
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
46. Данните  следва  да се докладват  индивидуално  и обобщени  в табличен  
вид, като за всяка  изпитвана  група  се показват  типовете  промени  и 
броят  на майките , потомството  по пол, и котилата , в които  се 
проявява  всеки  тип промяна . Ако е извършена  директна  постнатална  
експозиция  на потомството , пътят , продължителността  и периодът  на 
експозиция  следва  да се докладват . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 798
 
Оценка  и тълкуване  на резултатите  
47. Чрез  изследването  за невротоксичност  за развиващия  се организъм  се 
осигурява  информация  за ефектите  от многократната  експозиция  на 
даден  химикал  in utero  и през ранното  постнатално  развитие . Тъй 
като вниманието  е съсредоточено  както  върху  общата  токсичност , 
така и върху  крайните  точки  на невротоксичност  за развиващия  се 
организъм , резултатите  от изследването  позволяват  да се разграничат  
неврологичните  ефекти  върху  развиващия  се организъм , които  се 
явяват  при отсъствие  на обща  токсичност , свързана  с майката , и 
ефектите , които  се проявяват  само  на равнища , които  са токсични  и 
за майката  (27). Поради  сложните  взаимовръзки  между  плана  на 
изследването , статистическия  анализ  и биологичната  значимост  на 
данните , адекватното  тълкуване  на данните  за токсичността  за 
развиващия  се организъм  включват  експертна  оценка  (107)(109). При 
тълкуването  на резултатите  от изпитването  следва  да се използва  
подход , основан  на тежестта  на доказателствата  (20)(92)(93)(94). 
Моделите  на поведенчески  или морфологични  констатации , ако има 
такива , както  и доказателства  за зависимостта  доза-отговор  следва  да 
бъдат  обсъдени . В това охарактеризиране  трябва  да бъдат  включени  
данни  от всички  изследвания , относими  към оценката  на невротоксич­  
ността  за развиващия  се организъм , включително  епидемиологични  
изследвания  върху  човека  или докладвани  случаи  и експериментални  
изследвания  върху  животни  (напр . токсикокинетични  данни , 
информация  за зависимост  структура -активност , данни  от други  
изследвания  за токсичност ). Това  включва  връзката  между  дозите  от 
изпитвания  химикал  и наличието  или отсъствието , появата  и степента  
на всякакви  невротоксични  ефекти  за всеки  пол (20)(95).  
48. Оценката  на данните  следва  да включва  обсъждане  както  на биолог­  
ичната , така и на статистическата  значимост . Статистическият  анализ  
следва  да бъде  разглеждан  като инструмент , който  насочва , а не 
определя  тълкуването  на данните . Липса  на статистическа  значимост  
не следва  да е единствената  обосновка  за заключение  за липсата  на 
свързан  с третирането  ефект , точно  както  статистическата  значимост  
не следва  да е единствената  обосновка  за заключение  за наличие  на 
свързан  с третирането  ефект . За предпазване  от евентуални  неверни  
отрицателни  констатации  и присъщите  затруднения  при „доказване  
на отрицателното “ следва  да бъдат  обсъдени  положителните  и 
контролните  данни  за минали  периоди , особено  когато  няма  ефекти , 
свързани  с третирането  (102)(106). Вероятността  за неверни  полож­  
ителни  данни  следва  да се обсъди  в светлината  на общата  статист­  
ическа  оценка  на данните  (96). Оценката  следва  да включва  връзката  
(ако има такава ) между  наблюдаваните  невропатологични  и поведе­  
нчески  изменения . 
49. Всички  резултати  следва  да се анализират  с помощта  на статистически  
модели , които  са подходящи  от гледна  точка  на плана  на изследването  
(108). Изборът  на даден  параметричен  или непараметричен  анализ  
следва  да бъде  обоснован , като се вземат  предвид  фактори  като 
естеството  на данните  (трансформирани  или не), и тяхното  
разпределение , както  и относителната  надеждност  на избрания  статист­  
ически  анализ . Целта  и планът  на изследването  следва  да насочат  
избора  на статистически  анализи , за да се сведат  до минимум  
грешките  от тип I (неверни  положителни ) и тип II (неверни  отриц­  
ателни ) (96)(97)(104)(105). Изследвания  на развиващия  се организъм , 
използващи  многораждащи  видове , при които  се изпитват  множество  
новородени  от дадено  котило , следва  да включват  котилото  в статист­  
ическия  модел  за предпазване  срещу  завишен  процент  грешки  от тип I 
(98)(99)(100)(101). Измерваната  единица  за целите  на статистиката  
следва  да бъде  котилото , а не новороденото  животно . Експериментите  
трябва  да бъдат  планирани  по такъв  начин , че животните  от едно  
котило  да не се третират  като независими  наблюдения . Всяка  
многократно  измервана  крайна  точка  в един  и същ обект  следва  да 
се анализира  с използване  на статистически  модели , които  отчитат , 
че тези измервания  не са независими . 
Доклад  от изпитването  
50. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— физична  природа  и, където  е относимо , физични  и химични  
свойства ; 
— данни  за идентифициране , включително  източник ; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 799
 
— чистота  на сместа , както  и известни  и/или очаквани  онечиствания . 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— обосновка  за избора  на носител , когато  е различен  от вода  или 
физиологичен  разтвор . 
Изпитвани  животни : 
— използвани  видове  и породи  животни , и обосновка , ако са различни  
от плъхове ; 
— доставчик  на изпитваните  животни ; 
— брой , възраст  в началото  и пол на животните ; 
— източник , условия  на отглеждане , хранителен  режим , вода  и т.н.; 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на изпитването . 
Условия  на изпитване : 
— обосновка  за избора  на нивото  на доза; 
— обосновка  за пътищата  за дозиране  и периода  от време ; 
— спецификации  на прилаганите  дози , включително  подробности  за 
разтворителя , обема  и физичната  форма  на прилагания  материал ; 
— подробна  информация  за това в какъв  вид е изпитваният  химикал / 
хранителната  смес , постигната  концентрация , стабилност  и 
хомогенност  на сместа ; 
— метод , използван  за уникалната  идентификация  на майките  и 
потомството ; 
— подробно  описание  на процедурата (ите) за случаен  подбор , 
използвана (и) за определяне  на майките  за третираните  групи , за 
избор  на новородени  животни  за бракуване , както  и за 
разпределяне  на новородени  животни  по групи  за изпитване ; 
— подробна  информация  относно  прилагането  на изпитвания  
химикал ; 
— превръщане  от концентрация  на изпитвания  химикал  в храна / 
питейна  вода  или при вдишване  (ppm) в действителна  доза (mg 
на kg телесно  тегло  дневно ), ако е приложимо ; 
— условия  на средата , в която  се провежда  изпитването ; 
— подробности  за качеството  на храната  и водата  (напр . течаща , дест­  
илирана ); 
— дати  на началото  и приключването  на изследването . 
Наблюдения  и процедури  за изпитване : 
— подробно  описание  на процедурите , които  се използват  за 
стандартизиране  на наблюденията  и процедурите , както  и работни  
определения  при използване  на точкови  системи  за наблюденията ; 
— списък  на всички  използвани  процедури  на изпитване , както  и 
обосновка  за тяхното  използване ; 
— подробности  за използваните  поведенчески /функционални  и 
свързани  с патологията , неврохимията  или електрофизиологията  
процедури , включително  информация  и подробности  относно  
автоматизираните  устройства ; 
— процедури  за калибриране  и гарантиране  на равностойността  на 
устройствата  и на балансирането  на третираните  групи  в 
процедурите  за изпитване ; 
— кратка  обосновка , която  обяснява  всички  решения , свързани  с 
професионална  преценка . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 800
 
Резултати  (индивидуални  или обобщени , включително  средни  
стойности  и дисперсия , когато  е уместно ): 
— броят  на животните  в началото  на изследването  и броят  в края  на 
изследването ; 
— броят  на животните  и котилата , използвани  за всеки  метод  за 
изпитване ; 
— идентификационен  номер  на всяко  животно  и котилото , от което  
идва ; 
— размер  на котилото  и средно  тегло  при раждане  по пол; 
— телесно  тегло  и данни  за изменението  на телесното  тегло , включ­  
ително  телесно  тегло  на майките  и потомството  при 
прекратяването ; 
— данни  относно  консумацията  на храни  и, ако е приложимо , относно  
потреблението  на вода  (например , ако изпитваният  химикал  се 
приема  чрез водата ); 
— данни  за отговора  във връзка  с токсичността , по пол и ниво  на 
доза, включително  признаци  на токсичност  или смъртност , включ­  
ително  време  и причина  за смъртта , ако е уместно ; 
— естество , сила , продължителност , ден на поява , по кое време  през 
деня  и последващ  ход на подробните  клинични  наблюдения ; 
— резултати  по точкова  система  за всеки  ориентир  за развиващия  се 
организъм  (тегло , полово  съзряване  и поведенческа  онтогенеза ) за 
всяко  време  на наблюдение ; 
— подробности  за използваните  поведенчески /функционални  и 
свързани  с патологията , неврохимията  или електрофизиологията  
констатации  по пол, включващи  както  увеличенията , така и 
намаленията  в сравнение  с контролите ; 
— находки  при аутопсията ; 
— тегло  на мозъка ; 
— всякакви  диагнози , получени  от неврологични  признаци  и 
увреждания , включително  появили  се по естествен  път заболявания  
или състояния ; 
— изображения  на репрезентативни  находки ; 
— изображения  с незначително  увеличение  за установяване  на 
хомоложността  на срезовете , използвани  за морфометрията ; 
— данни  за абсорбцията  и метаболизма , включително  допълнителни  
данни  от отделно  токсикокинетично  изследване , ако са налични ; 
— статистическа  обработка  на резултатите , включително  статист­  
ически  модели , използвани  за анализ  на данните  и резултатите , 
независимо  дали  са значими  или не; 
— списък  на изследователския  персонал , включително  и профес­  
ионално  обучение . 
Обсъждане  на резултатите : 
— информация  за доза-отговор , по пол и група ; 
— връзка  на всякакви  други  токсични  ефекти  със заключението  за 
невротоксичния  потенциал  на изпитвания  химикал , по пол и група ; 
— въздействие  на всякаква  токсикокинетична  информация  върху  
заключенията ; 
— прилики  с ефектите  от всякакви  известни  невротоксиканти ; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 801
 
— данни  в подкрепа  на надеждността  и чувствителността  на метода  за 
изпитване  (т.е. положителни  и контролни  данни  за минали  
периоди ); 
— зависимости  (ако има такива ) между  невропатологични  и функц­  
ионални  ефекти ; 
— NOAEL или еталонна  доза за майки  и потомство , по пол и група . 
Заключения : 
— обсъждане  на общото  тълкуване  на данните  въз основа  на резулт­  
атите , включително  заключение  дали  изпитваният  химикал  е 
причинил  невротоксичност  за развиващия  се организъм , и NOAEL.  
ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD (1995). Draft Report of the OECD  Ad Hoc  Working Group on 
Reproduction and Developmental Toxicity. Copenhagen, Denmark, 13- 14 June 1995.
 
(2) US EPA (1998). U.S. Environmental Protection Agency Health Effects 
Test Guidelines. OPPTS 870.6300. Developmental Neurotoxicity Study. 
US EPA 712-C-98-239. Available: [http://www.epa.gov/opptsfrs/ OPPTS_Harmonized/870_Health_Effects_Test_Guidelines/Series/].
 
(3) US EPA (1998). Guidelines for Neurotoxicity Risk Assessment. US EPA 
630/R-95/001F. Available: [http://cfpub.epa.gov/ncea/cfm/recordisp ­
lay.cfm?PrintVersion=True&deid=12479].  
(4) Cory-Slechta, D.A., Crofton, K.M., Foran, J.A., Ross, J.F., Sheets, L.P., 
Weiss, B., Mileson, B. (2001). Methods to identify and characterize deve ­
lopmental neurotoxicity for human health risk assessment: I. Behavioral 
effects. Environ. Health Perspect., 109:79-91.  
(5) Dorman, D.C., Allen, S.L., Byczkowski, J.Z., Claudio, L., Fisher, J.E. Jr., 
Fisher, J.W., Harry, G.J., Li, A.A., Makris, S.L., Padilla, S., Sultatos, L.G., 
Mileson, B.E. (2001). Methods to identify and characterize developmental 
neurotoxicity for human health risk assessment: III. Pharmacokinetic and pharmacodynamic considerations. Environ. Health Perspect., 109:101-111.
 
(6) Garman, R.H., Fix,A.S., Jortner, B.S., Jensen, K.F., Hardisty, J.F., 
Claudio, L., Ferenc, S. (2001). Methods to identify and characterize deve ­
lopmental neurotoxicity for human health risk assessment: II. Neuropat ­
hology. Environ. Health Perspect., 109:93-100.  
(7) OECD (2003). Report of the OECD Expert Consultation Meeting on 
Developmental Neurotoxicity Testing. Washington D.C., US, 
23-25 October 2000.  
(8) OECD (2008). OECD Environment, Health and Safety Publications Series 
on Testing and Assessment № 43. Guidance Document on Mammalian 
Reproductive Toxicity Testing and Assessment. Environment Directorate, 
OECD, Paris. July 2008 Available: [http://search.oecd.org/officialdocu ­
ments/displaydocumentpdf/?cote=env/jm/mono(2008)16&doclanguage = en].  
(9) OECD (2003). OECD Environment, Health and Safety Publications Series 
on Testing and Assessment № 20. Guidance Document for Neurotoxicity 
Testing. Environment Directorate, OECD, Paris, September 2003. Available: [http://www.oecd.org/document/22/0,2340,en_2649_34377_1916054_1_1_ 1_1,00.html].
 
(10) Kimmel, C.A., Rees, D.C., Francis, E.Z. (1990) Qualitative and quanti ­
tative comparability of human and animal developmental neurotoxicity. Neurotoxicol. Teratol., 12: 173-292.
 
(11) Spencer, P.S., Schaumburg, H.H., Ludolph, A.C. (2000)  Experimental and 
Clinical Neurotoxicology, 2nd Edition,  ISBN 0195084772, Oxford 
University Press, New York.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 802
 
(12) Mendola, P., Selevan, S.G., Gutter, S., Rice, D. (2002) Environmental 
factors associated with a spectrum of neurodevelopmental deficits. Ment. 
Retard. Dev. Disabil. Res. Rev. 8:188-197.  
(13) Slikker, W.B., Chang, L.W. (1998)  Handbook of Developmental Neuroto ­
xicology , 1st Edition , ISBN 0126488606, Academic Press, New York.  
(14) Глава  Б.34 от настоящото  приложение , Изпитване  за токсичност  за 
размножаването  в едно  поколение . 
(15) Глава  Б.35 от настоящото  приложение , Изпитване  за репродуктивна  
токсичност  в две поколения . 
(16) Глава  Б.43 от настоящото  приложение , Невротоксикологично  
изследване  при гризачи . 
(17) Глава  Б.31 от настоящото  приложение , Изпитване  за оценка  на токс­  
ичността  за пренаталното  развитие . 
(18) Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
22 септември  2010 година  относно  защитата  на животните , 
използвани  за научни  цели . ОВ L 276, 20.10.2010 г., стр. 33.  
(19) WHO (1986)  Principles and Methods for the Assessment of Neurotoxicity 
Associated with Exposure to Chemicals , (Environmental Health Criteria 
60), Albany, New York: World Health Organization Publications Center, 
USA. Available: [http://www.inchem.org/documents/ehc/ehc/ehc060.htm].  
(20) WHO (2001)  Neurotoxicity Risk Assessment for Human Health: Principles 
and Approaches,  (Environmental Health Criteria 223), World Health Orga ­
nization Publications, Geneva. Available: [http://www.intox.org/databank/ 
documents/supplem/supp/ehc223.htm].  
(21) Chang, L.W., Slikker, W. (1995)  Neurotoxicology: Approaches and 
Methods , 1st Edition , ISBN 012168055X, Academic Press, New York.  
(22) De Cabo, C., Viveros, M.P. (1997) Effects of neonatal naltrexone on 
neurological and somatic development in rats of both genders. Neuroto ­
xicol. Teratol., 19:499-509.  
(23) Agnish, N.D., Keller, K.A. (1997) The rationale for culling of rodent 
litters. Fundam. Appl. Toxicol., 38:2-6.  
(24) Avery, D.L., Spyker, J.M. (1977) Foot tattoo of neonatal mice. Lab. 
Animal Sci., 27:110-112.  
(25) Wier, P.J., Guerriero, F.J., Walker, R.F. (1989) Implementation of a 
primary screen for developmental neurotoxicity. Fundam. Appl. Toxicol., 13:118-136.
 
(26) Spear, N.E., Campbell, B.A. (1979)  Ontogeny of Learning and Memory . 
ISBN 0470268492, Erlbaum Associates, New Jersey.  
(27) Krasnegor, N.A., Blass, E.M., Hofer, M.A., Smotherman, W. (1987)  
Perinatal Development: A Psychobiological Perspective.  Academic 
Press, Orlando.  
(28) Zoetis, T., Walls, I. (2003)  Principles and Practices for Direct Dosing of 
Pre-Weaning Mammals in Toxicity Testing and Research . ILSI Press, 
Washington, DC.  
(29) Moser, V., Walls, I., Zoetis, T. (2005) Direct dosing of preweaning 
rodents in toxicity testing and research: Deliberations of an ILSI RSI expert working group. Int. J. Toxicol., 24:87-94.
 
(30) Conolly, R.B., Beck, B.D., Goodman, J.I. (1999) Stimulating research to 
improve the scientific basis of risk assessment. Toxicol. Sci., 49: 1-4.  
(31) ICH (1993) ICH Harmonised Tripartite Guideline: Detection of Toxicity to 
Reproduction for Medical Products (S5A). International Conference on 
Harmonisation of Technical Requirements for Registration of Phamaceu ­
ticals for Human Use.  
(32) Lochry, E.A. (1987) Concurrent use of behavioral/functional testing in 
existing reproductive and developmental toxicity screens: Practical consi ­
derations. J. Am. Coll. Toxicol., 6:433-439.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 803
 
(33) Tachibana, T., Narita, H., Ogawa, T., Tanimura, T. (1998) Using postnatal 
age to determine test dates leads to misinterpretation when treatments alter 
gestation length, results from a collaborative behavioral teratology study in Japan. Neurotoxicol. Teratol., 20:449-457.
 
(34) Gallavan, R.H. Jr., Holson, J.F., Stump, D.G., Knapp, J.F., Reynolds, V.L. 
(1999) Interpreting the toxicologic significance of alterations in anogenital 
distance: potential for confounding effects of progeny body weights. Reprod. Toxicol., 13:383-390.
 
(35) Gray, L.E. Jr., Ostby, J., Furr, J., Price, M., Veeramachaneni, D.N., Parks, 
L. (2000) Perinatal exposure to the phthalates DEHP, BBP, and DINP, but 
not DEP, DMP, or DOTP, alters sexual differentiation of the male rat. Toxicol. Sci., 58:350-365.
 
(36) Adams, J., Buelke-Sam, J., Kimmel, C.A., Nelson, C.J., Reiter, L.W., 
Sobotka, T.J., Tilson, H.A., Nelson, B.K. (1985) Collaborative behavioral teratology study: Protocol design and testing procedure. Neurobehav. Toxicol. Teratol., 7:579-586.
 
(37) Korenbrot, C.C., Huhtaniemi, I.T., Weiner, R.W. (1977) Preputial sepa ­
ration as an external sign of pubertal development in the male rat. Biol. Reprod., 17:298-303.
 
(38) Spear, L.P. (1990) Neurobehavioral assessment during the early postnatal 
period. Neurotoxicol. Teratol., 12:489-95.  
(39) Altman, J., Sudarshan, K. (1975) Postnatal development of locomotion in 
the laboratory rat. Anim. Behav., 23:896-920.  
(40) Adams, J. (1986) Methods in Behavioral Teratology. In:  Handbook of 
Behavioral Teratology.  Riley, E.P., Vorhees, C.V. (eds.) Plenum Press, 
New York, pp. 67-100.  
(41) Reiter, L.W., MacPhail, R.C. (1979) Motor activity: A survey of methods 
with potential use in toxicity testing. Neurobehav. Toxicol., 1:53-66.  
(42) Robbins, T.W. (1977) A critique of the methods available for the measu ­
rement of spontaneous motor activity,  Handbook of Psychopharmacology , 
Vol. 7, Iverson, L.L., Iverson, D.S., Snyder, S.H., (eds.) Plenum Press, 
New York, pp. 37-82.  
(43) Crofton, K.M., Peele, D.B., Stanton, M.E. (1993) Developmental neuroto ­
xicity following neonatal exposure to 3,3'-iminodipropionitrile in the rat. 
Neurotoxicol. Teratol., 15:117-129.  
(44) Ruppert, P.H., Dean, K.F., Reiter, L.W. (1985) Development of locomotor 
activity of rat pups in figure-eight mazes. Dev. Psychobiol., 18:247-260.  
(45) Crofton, K.M., Howard, J.L., Moser, V.C., Gill, M.W., Reiter, L.W., 
Tilson, H.A., MacPhail, R.C. (1991) Interlaboratory comparison of 
motor activity experiments: Implications for neurotoxicological assess ­
ments. Neurotoxicol. Teratol., 13:599-609.  
(46) Ross, J. F., Handley, D. E., Fix, A. S., Lawhorn, G. T., Carr, G. J. (1997) 
Quantification of the hind-limb extensor thrust response in rats. Neuroto ­
xicol. Teratol., 19:1997. 405-411.  
(47) Handley, D.E., Ross, J.F., Carr, G.J. (1998) A force plate system for 
measuring low-magnitude reaction forces in small laboratory 
animals.Physiol. Behav., 64:661-669.  
(48) Edwards, P.M., Parker, V.H. (1977) A simple, sensitive, and objective 
method for early assessment of acrylamide neuropathy in rats. Toxicol. 
Appl. Pharmacol., 40:589-591.  
(49) Davis, M. (1984) The mammalian startle response. In:  Neural Mechanisms 
of Startle Behavior , Eaton, R.C. (ed), Plenum Press, New York, pp. 287- 
351 
(50) Koch, M. (1999) The neurobiology of startle. Prog. Neurobiol., 59:107- 
128. 
(51) Crofton, K.M. (1992) Reflex modification and the assessment of sensory 
dysfunction. In  Target Organ Toxicology Series: Neurotoxicology , Tilson, 
H., Mitchell, C. (eds). Raven Press, New York, pp. 181-211.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 804
 
(52) Crofton, K.M., Sheets, L.P. (1989) Evaluation of sensory system function 
using reflex modification of the startle response. J. Am. Coll. Toxicol., 
8:199-211.  
(53) Crofton, K.M, Lassiter, T.L, Rebert, C.S. (1994) Solvent-induced 
ototoxicity in rats: An atypical selective mid-frequency hearing deficit. Hear. Res.,80:25-30.
 
(54) Ison, J.R. (1984) Reflex modification as an objective test for sensory 
processing following toxicant exposure. Neurobehav. Toxicol. Teratol., 
6:437–445.  
(55) Mattsson, J.L., Boyes, W.K., Ross, J.F. (1992) Incorporating evoked 
potentials into neurotoxicity test schemes. In:  Target Organ Toxicology 
Series: Neurotoxicity , Tilson, H., Mitchell, C., (eds.), Raven Press, New 
York. pp. 125-145.  
(56) Peele, D.B., Allison, S.D., Crofton, K.M. (1990) Learning and memory 
deficits in rats following exposure to 3,3'-iminopropionitrile. Toxicol. Appl. Pharmacol., 105:321-332.
 
(57) Bammer, G. (1982) Pharmacological investigations of neurotransmitter 
involvement in passive avoidance responding: A review and some new results. Neurosci. Behav. Rev., 6:247-296.
 
(58) Bushnell, P.J. (1988) Effects of delay, intertrial interval, delay behavior 
and trimethyltin on spatial delayed response in rats. Neurotoxicol. Teratol., 
10:237-244.  
(59) Green, R.J., Stanton, M.E. (1989) Differential ontogeny of working 
memory and reference memory in the rat. Behav. Neurosci., 103:98-105.  
(60) Kucharski, D., Spear, N.E. (1984) Conditioning of aversion to an odor 
paired with peripheral shock in the developing rat. Develop. Psychobiol., 
17:465-479.  
(61) Morris, R. (1984) Developments of a water-maze procedure for studying 
spatial learning in the rat. J. Neurosci. Methods, 11:47-60.  
(62) Brandeis, R., Brandys, Y., Yehuda, S. (1989) The use of the Morris water 
maze in the study of memory and learning. Int. J. Neurosci., 48:29-69.  
(63) D'Hooge, R., De Deyn, P.P. (2001) Applications of the Morris water maze 
in the study of learning and memory. Brain Res. Rev, 36:60-90.  
(64) Vorhees, C.V. (1987) Maze learning in rats: A comparison of performance 
in two water mazes in progeny prenatally exposed to different doses of phenytoin. Neurotoxicol. Teratol., 9:235-241.
 
(65) Vorhees, C.V. (1997) Methods for detecting long-term CNS dysfunction 
after prenatal exposure to neurotoxins. Drug Chem. Toxicol., 20:387-399.  
(66) Akaike, M., Tanaka, K., Goto, M., Sakaguchi, T. (1988) Impaired Biel and 
Radial arm maze learning in rats with methyl-nitrosurea induced micro ­
cephaly. Neurotoxicol. Teratol., 10:327-332.  
(67) Cory-Slechta, D.A., Weiss, B., Cox, C. (1983) Delayed behavioral toxicity 
of lead with increasing exposure concentration. Toxicol. Appl. Pharmacol., 
71:342-352.  
(68) Campbell, B.A., Haroutunian, V. (1981) Effects of age on long-term 
memory: Retention of fixed interval responding. J. Gerontol ., 36:338–341.  
(69) Fix, A.S, Garman, R.H. (2000) Practical aspects of neuropathology: A 
technical guide for working with the nervous system. Toxicol. Pathol., 
28: 122-131.  
(70) Prophet, E.B., Mills, B., Arrington, J.B., Sobin, L.H. (1994)  Laboratory 
Methods in Histotechnology , American Registry of Pathology, 
Washington, DC, pp. 84-107.  
(71) Bancroft, J.D., Gamble, M. (2002)  Theory and Practice of Histological 
Techniques , 5th edition, Churchill Livingstone, London.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 805
 
(72) Fix, A.S., Ross, J.F., Stitzel, S.R., Switzer, R.C. (1996) Integrated 
evaluation of central nervous system lesions: stains for neurons, astrocytes, 
and microglia reveal the spatial and temporal features of MK-801-induced neuronal necrosis in the rat cerebral cortex. Toxicol. Pathol., 24: 291-304.
 
(73) Schmued, L.C., Hopkins, K.J. (2000) Fluoro-Jade B: A high affinity tracer 
for the localization of neuronal degeneration. Brain Res., 874:123-130.  
(74) Krinke, G.J., Classen, W., Vidotto, N., Suter, E., Wurmlin, C.H. (2001) 
Detecting necrotic neurons with fluoro-jade stain. Exp. Toxic. Pathol., 
53:365-372.  
(75) De Olmos, I.S., Beltramino, C.A., and de Olmos de Lorenzo, S. (1994) 
Use of an amino-cupric-silver technique for the detection of early and 
semiacute neuronal degeneration caused by neurotoxicants, hypoxia and physical trauma. Neurotoxicol. Teratol., 16, 545-561.
 
(76) De Groot, D.M.G., Bos-Kuijpers, M.H.M., Kaufmann, W.S.H., Lammers, 
J.H.C.M., O'Callaghan, J.P., Pakkenberg, B., Pelgrim, M.T.M., Waalkens-Berendsen, I.D.H., Waanders, M.M., Gundersen, H.J. (2005a) Regulatory developmental neurotoxicity testing: A model study focusing 
on conventional neuropathology endpoints and other perspectives. 
Environ. Toxicol. Pharmacol., 19:745-755.
 
(77) De Groot, D.M.G., Hartgring, S., van de Horst, L., Moerkens, M., Otto, 
M., Bos-Kuijpers, M.H.M., Kaufmann, W.S.H., Lammers, J.H.C.M., 
O'Callaghan, J.P., Waalkens-Berendsen, I.D.H., Pakkenberg, B., Gundersen, H.J. (2005b) 2D and 3D assessment of neuropathology in rat brain after prenatal exposure to methylazoxymethanol, a model for 
developmental neurotoxicity. Reprod. Toxicol., 20:417-432.
 
(78) Rodier, P.M., Gramann, W.J. (1979) Morphologic effects of interference 
with cell proliferation in the early fetal period. Neurobehav. Toxicol., 
1:129–135.  
(79) Howard, C.V., Reed, M.G. (1998)  Unbiased Stereology: 
Three-Dimensional Measurement in Microscopy , Springer-Verlag, New 
York.  
(80) Hyman, B.T., Gomez-Isla, T., Irizarry, M.C. (1998) Stereology: A 
practical primer for neuropathology. J. Neuropathol. Exp. Neurol., 57: 
305-310.  
(81) Korbo, L., Andersen, B.B., Ladefoged, O., Møller, A. (1993) Total 
numbers of various cell types in rat cerebellar cortex estimated using an 
unbiased stereological method. Brain Res., 609: 262-268.  
(82) Schmitz, C. (1997) Towards more readily comprehensible procedures in 
disector stereology. J. Neurocytol., 26:707-710.  
(83) West, M.J. (1999) Stereological methods for estimating the total number of 
neurons and synapses: Issues of precision and bias. Trends Neurosci., 
22:51-61.  
(84) Schmitz, C., Hof, P.R. (2005) Design-based stereology in neuroscience. 
Neuroscience, 130: 813–831.  
(85) Gavin, C.E., Kates, B., Gerken, L.A., Rodier, P.M. (1994) Patterns of 
growth deficiency in rats exposed  in utero  to undernutrition, ethanol, or 
the neuroteratogen methylazoxymethanol (MAM). Teratology, 49:113-121.  
(86) Ohno, M., Aotani, H., Shimada, M. (1995) Glial responses to hypoxic/ 
ischemic encephalopathy in neonatal rat cerebrum. Develop. Brain Res., 
84:294-298.  
(87) Jensen KF, Catalano SM. (1998) Brain morphogenesis and developmental 
neurotoxicology. In:  Handbook of Developmental Neurotoxicology , 
Slikker, Jr. W., Chang, L.W. (eds) Academic Press, New York, pp. 3-41.  
(88) Ikonomidou, C., Bosch, F., Miksa, M., Bittigau, P., Vöckler, J., Dikranian, 
K., Tenkova, T.I., Stefovska, V., Turski, L., Olney, J.W. (1999) Blockade 
of NMDA receptors and apoptotic neurodegeneration in the developing 
brain. Science, 283:70-74.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 806
 
(89) Ikonomidou, C., Bittigau, P., Ishimaru, M.J., Wozniak, D.F., Koch, C., 
Genz, K., Price, M.T., Sefovska, V., Hörster, F., Tenkova, T., Dikranian, 
K., Olney, J.W. (2000) Ethanol-induced apoptotic degeneration and fetal alcohol syndrome. Science, 287:1056–1060.
 
(90) Friede, R. L. (1989)  Developmental Neuropathology . Second edition. 
Springer-Verlag, Berlin.  
(91) House, D.E., Berman, E., Seeley, J.C., Simmons, J.E. (1992) Comparison 
of open and blind histopathologic evaluation of hepatic lesions. Toxicol. Let., 63:127-133.
 
(92) Tilson, H.A., MacPhail, R.C., Crofton, K.M. (1996) Setting exposure 
standards: a decision process. Environ. Health Perspect., 104:401-405.  
(93) US EPA (2005) Guidelines for Carcinogen Risk Assessment. US EPA 
NCEA-F-0644A.  
(94) US EPA (1996) Guidelines for Reproductive Toxicity Risk Assessment, 
Federal Register 61(212): 56274-56322.  
(95) Danish Environmental Protection Agency (1995)  Neurotoxicology.  Review 
of Definitions, Methodology, and Criteria. Miljøprojekt nr. 282. Lade ­
foged, O., Lam, H.R., Østergaard, G., Nielsen, E., Arlien-Søborg, P.  
(96) Muller, K.E., Barton, C.N., Benignus, V.A. (1984). Recommendations for 
appropriate statistical practice in toxicologic experiments. Neurotoxi ­
cology, 5:113-126.  
(97) Gad, S.C. (1989) Principles of screening in toxicology with special 
emphasis on applications to Neurotoxicology. J. Am. Coll. Toxicol., 
8:21-27.  
(98) Abby, H., Howard, E. (1973) Statistical procedures in developmental 
studies on a species with multiple offspring. Dev. Psychobiol., 6:329-335.  
(99) Haseman, J.K., Hogan, M.D. (1975) Selection of the experimental unit in 
teratology studies. Teratology, 12:165-172.  
(100) Holson, R.R., Pearce, B. (1992) Principles and pitfalls in the analysis of 
prenatal treatment effects in multiparous species. Neurotoxicol. Teratol., 
14: 221-228.  
(101) Nelson, C.J., Felton, R.P., Kimmel, C.A., Buelke-Sam, J., Adams, J. 
(1985) Collaborative Behavioral Teratology Study: Statistical approach. Neurobehav. Toxicol. Teratol., 7:587-90.
 
(102) Crofton, K.M., Makris, S.L., Sette, W.F., Mendez, E., Raffaele, K.C. 
(2004) A qualitative retrospective analysis of positive control data in developmental neurotoxicity studies. Neurotoxicol. Teratol., 26:345-352.
 
(103) Bolon, B., Garman, R., Jensen, K., Krinke, G., Stuart, B., and an  ad hoc  
working group of the STP Scientific and Regulatory Policy Committee. (2006) A ‘best practices’ approach to neuropathological assessment in developmental neurotoxicity testing — for today. Toxicol. Pathol. 
34:296-313.
 
(104) Tamura, R.N., Buelke-Sam, J. (1992) The use of repeated measures 
analysis in developmental toxicology studies. Neurotoxicol. Teratol., 14(3):205-210.
 
(105) Tukey, J.W., Ciminera, J.L., Heyse, J.F. (1985) Testing the statistical 
certainty of a response to increasing doses of a drug. Biometrics, 41:295-301.
 
(106) Crofton, K.M., Foss, J.A., Haas, U., Jensen, K., Levin, E.D., and Parker, 
S.P. (2008) Undertaking positive control studies as part of developmental neurotoxicity testing: report from the ILSI Research Foundation/Risk Science Institute expert working group on neurodevelopmental endpoints.  
Neurotoxicology and Teratology , 30(4):266-287.
 
(107) Raffaele, K.C., Fisher, E., Hancock, S., Hazelden, K., and Sobrian, S.K. 
(2008) Determining normal variability in a developmental neurotoxicity test: report from the ILSI Research Foundation/Risk Science Institute 
expert working group on neurodevelopmental endpoints.  Neurotoxicology 
and Teratology,  30(4):288-325.
 ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 807
 
(108) Holson, R.R., Freshwater, L., Maurissen, J.P.J., Moser, V.C., and Phang, 
W. (2008) Statistical issues and techniques appropriate for developmental 
neurotoxicity testing: a report from the ILSI Research Foundation/Risk Science Institute expert working group on neurodevelopmental endpoints.  
Neurotoxicology and Teratology , 30(4):326-348.
 
(109) Tyl, R.W., Crofton, K.M., Moretto, A., Moser, V.C., Sheets, L.P., and 
Sobotka, T.J. (2008) Identification and interpretation of developmental neurotoxicity effects: a report from the ILSI Research Foundation/Risk Science Institute expert working group on neurodevelopmental endpoints  
Neurotoxicology and Teratology , 30(4):349-381.
 ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 808
 
Фигура  1 
Обща  схема  за изпитване  за функционални /поведенчески  изпитвания , оценка  на 
невропатологията  и тегло  на мозъка . Тази  диаграма  се основава  на описанието  в 
параграфи  13—15 ( ПНД  = постнатален  ден). Примери  за разпределяне  на животни  са 
дадени  в допълнение  1.
 ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 809
 
Допълнение  1 
1. Примери  за възможни  разпределения  са описани  и представени  в 
табличен  вид по-долу . Тези  примери  са предоставени , за да се 
илюстрира  това, че разпределянето  на животни  за изследване  по 
различни  парадигми  за изпитване  може  да се извърши  по няколко  
различни  начина . 
Пример  1 
2. Един  набор  от 20 новородени  от пол и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  и 
1 женско  от котило ) се използва  за изследване  на поведенческата  
онтогенеза  преди  отбиване . От тези животни  10 новородени  от пол и 
от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  или 1 женско  от котило ) се умъртвяват  
по хуманен  начин  през ПНД  22. Мозъкът  се отстранява , претегля  се и 
се обработва  за хистопатологична  оценка . Освен  това данните  за 
теглото  на мозъка  се събират , като се използва  нефиксиран  мозък  от 
оставащите  10 мъжки  и 10 женски  животни  от ниво  на доза. 
3. Друг  набор  от 20 новородени  от пол и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  и 
1 женско  от котило ) се използва  за функционални /поведенчески  
изпитвания  след  отбиване  (подробни  клинични  наблюдения , 
изпитване  на двигателната  активност , чрез интензивни  слухови  
стимули , на когнитивната  функция  при млади  животни ) и оценка  на 
възрастта  на полово  съзряване . От тези животни  10 новородени  от пол 
и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  или 1 женско  от котило ) се анестезират  
и се фиксират  чрез перфузия  при прекратяване  на изследването  
(приблизително  през ПНД  70). След  допълнителна  фиксация  in situ, 
мозъкът  се отстранява  и се обработва  за невропатологична  оценка . 
4. Трети  набор  от 20 новородени  от пол и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  и 
1 женско  от котило ) се използва  за изпитване  на когнитивната  функция  
при млади  полово  зрели  животни  (напр . ПНД  60—70). От тези 
животни , 10 животни  от пол и от група  (1 мъжко  и 1 женско  от 
котило ) се умъртвяват  при прекратяване  на изследването  и мозъкът  
се отстранява  и се претегля . 
5. Останалите  20 животни  от пол и от група  се запазени  за евентуални  
допълнителни  изпитвания . 
Таблица  1 
Новородено  № ( а ) Брой  новородени , 
разпределени  за 
изпитване  Преглед /Изпитване  
м ж 
1 5 20 м + 20 ж Поведенческа  онтогенеза  
10 м + 10 ж ПНД  22 тегло  на мозъка / 
невропатология /морфометрия  
10 м + 10 ж ПНД  22 тегло  на мозъка  
2 6 20 м + 20 ж Подробни  клинични  набл­  
юдения  
20 м + 20 ж Двигателна  активност  
20 м + 20 ж Полово  съзряване  
20 м + 20 ж Двигателна  и сензорна  
функция  
20 м + 20 ж Научаване  и запаметяване  
(ПНД  25) 
10 м + 10 ж Тегло  на мозъка /невропат­  
ология /морфометрия  при 
млади  полово  зрели  животни  
~ ПНД  70 ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 810
 
Новородено  № ( а ) Брой  новородени , 
разпределени  за 
изпитване  Преглед /Изпитване  
м ж 
3 7 20 м + 20 ж Научаване  и запаметяване  
(млади  полово  зрели  животни ) 
10 м + 10 ж Тегло  на мозъка  при млади  
полово  зрели  животни  ~ 
ПНД  70 
4 8 — Резерв  от животни  за замяна  
или за допълнителни  
изпитвания  
( а ) За този пример  животните  са бракувани  до оставане  на 4 мъжки  + 4 женски  
от котило ; мъжките  новородени  са номерирани  с номера  от 1 до 4, а женските  
новородени  — от 5 до 8. 
Пример  2 
6. Един  набор  от 20 новородени  от пол и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  и 
1 женско  от котило ) се използва  за изследване  на поведенческата  
онтогенеза  преди  отбиване . От тези животни  10 новородени  от пол и 
от ниво  на доза (1 мъжко  или 1 женско  от котило ) се умъртвяват  по 
хуманен  начин  през ПНД  11. Мозъкът  се отстранява , претегля  се и се 
обработва  за хистопатологична  оценка . 
7. Друг  набор  от 20 животни  от всеки  пол и ниво  на доза (1 мъжко  и 1 
женско  от котило ) се използва  за изследвания  след  отбиване  (подробни  
клинични  наблюдения , двигателна  активност , оценка  на възрастта  на 
полово  съзряване  и двигателна  и сензорна  функция ). От тези животни  
10 новородени  от пол и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  или 1 женско  от 
котило ) се анестезират  и се фиксират  чрез перфузия  при прекратяване  
на изследването  (приблизително  през ПНД  70). След  допълнителна  
фиксация  in situ , мозъкът  се отстранява , претегля  се и се обработва  
за невропатологична  оценка . 
8. 10 новородени  от пол и от ниво  на доза (т.е., 1 мъжко  или 1 женско  от 
котило ) се използват  за изпитване  на когнитивната  функция  при млади  
и млади  полово  зрели  животни . При изпитването  за когнитивната  
функция  през ПНД  23 и при млади  полово  зрели  животни  се 
използват  различни  животни . При прекратяването  изпитваните  като 
полово  зрели  10 животни  от пол и от група  се умъртвяват , мозъкът  
се отстранява  и се претегля . 
9. Оставащите  20 животни  от пол и от група , които  не са избрани  за 
изпитване , се умъртвяват  и отстраняват  при отбиването . 
Таблица  2 
Новородено  № ( а ) Брой  новородени , 
разпределени  за 
изпитване  Преглед /Изпитване  
м ж 
1 5 20 м + 20 ж Поведенческа  онтогенеза  
10 м + 10 ж ПНД  11 тегло  на мозъка / 
невропатология /морфометрия  
2 6 20 м + 20 ж Подробни  клинични  набл­  
юдения  
20 м + 20 ж Двигателна  активност  
20 м + 20 ж Полово  съзряване  
20 м + 20 ж Двигателна  и сензорна  
функция  
10 м + 10 ж Тегло  на мозъка /невропат­  
ология /морфометрия  при 
млади  полово  зрели  животни  
~ ПНД  70 ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 811
 
Новородено  № ( а ) Брой  новородени , 
разпределени  за 
изпитване  Преглед /Изпитване  
м ж 
3 7 10 м + 10 ж ( b ) Научаване  и запаметяване  
(ПНД  23) 
3 7 10 м + 10 ж ( b ) Научаване  и запаметяване  
(млади  полово  зрели  животни ) 
Тегло  на мозъка  при млади  
полово  зрели  животни  
4 8 — Умъртвени  и отстранени  
животни  ПНД  21.  
( a ) За този пример  животните  са бракувани  до оставане  на 4 мъжки  + 4 женски  
от котило ; мъжките  новородени  са номерирани  с номера  от 1 до 4, а женските  
новородени  — от 5 до 8. 
( b ) Използват  се различни  новородени  за когнитивни  изпитвания  през ПНД  23 и 
при млади  полово  зрели  животни  (например  четни /нечетни  котила  от общо  20). 
Пример  3 
10. Един  набор  от 20 новородени  от пол и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  и 
1 женско  от котило ) се използва  за претегляне  на мозъка  и оценка  на 
невропатологията  през ПНД  11. От тези животни  10 новородени  от пол 
и от ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  или 1 женско  от котило ) се умъртвяват  
по хуманен  начин  през ПНД  11 и мозъкът  се отстранява , претегля  се и 
се обработва  за хистопатологична  оценка . Освен  това данните  за 
теглото  на мозъка  се събират , като се използва  нефиксиран  мозък  от 
оставащите  10 мъжки  и 10 женски  животни  от ниво  на доза. 
11. Друг  набор  от 20 животни  от всеки  пол и ниво  на доза (т.е., 1 мъжко  и 
1 женско  от котило ) се използва  за поведенческа  онтогенеза  (двиг­  
ателна  активност ), изследвания  след  отбиване  (двигателна  активност  
и оценка  на възрастта  на полово  съзряване ) и изпитване  на когнитивна  
функция  при млади  животни . 
12. Друг  набор  от 20 животни  от всеки  пол и ниво  на доза (т.е., 1 мъжко  и 
1 женско  от котило ) се използва  за изпитване  на двигателната  и 
сензорна  функция  (чрез интензивни  слухови  стимули ) и подробни  
клинични  наблюдения . От тези животни  10 новородени  от пол и от 
ниво  на доза (т.е. 1 мъжко  или 1 женско  от котило ) се анестезират  и се 
фиксират  чрез перфузия  при прекратяване  на изследването  (приблиз­  
ително  през ПНД  70). След  допълнителна  фиксация  in situ, мозъкът  се 
отстранява , претегля  се и се обработва  за невропатологична  оценка . 
13. Друг  набор  от 20 животни  от всеки  пол и ниво  на доза се използва  за 
изпитване  на когнитивната  функция  при млади  полово  зрели  животни  
(т.е., 1 мъжко  и 1 женско  от котило ). От тях 10 животни  от пол и от 
група  (т.е. 1 мъжко  или 1 женско  от котило ) се умъртвяват  при 
прекратяване  на изследването , мозъкът  се отстранява  и се претегля . 
Таблица  3 
Новородено  № ( а ) Брой  новородени , 
разпределени  за 
изпитване  Преглед /Изпитване  
м ж 
1 5 10 м + 10 ж ПНД  11 тегло  на мозъка / 
невропатология /морфометрия  
10 м + 10 ж ПНД  11 тегло  на мозъка  
2 6 20 м + 20 ж Поведенческа  онтогенеза  
(двигателна  активност ) 
20 м + 20 ж Двигателна  активност  
20 м + 20 ж Полово  съзряване  
20 м + 20 ж Научаване  и запаметяване  
(ПНД  27) ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 812
 
Новородено  № ( а ) Брой  новородени , 
разпределени  за 
изпитване  Преглед /Изпитване  
м ж 
3 7 20 м + 20 ж Изпитване  чрез интензивни  
слухови  стимули  (млади  
животни  и млади  полово  
зрели  животни ) 
20 м + 20 ж Подробни  клинични  набл­  
юдения  
10 м + 10 ж Млади  полово  зрели  животни  
— тегло  на мозъка /невропат­  
ология / морфометрия  ~ ПНД  
70 
4 8 20 м + 20 ж Научаване  и запаметяване  
(млади  полово  зрели  животни ) 
10 м + 10 ж Тегло  на мозъка  при млади  
полово  зрели  животни  
( а ) За този пример  животните  са бракувани  до оставане  на 4 мъжки  + 4 женски  
от котило ; мъжките  новородени  са номерирани  с номера  от 1 до 4, а женските  
новородени  — от 5 до 8. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 813
 
Допълнение  2 
Определения  
Химикал : Вещество  или смес  
Изпитван  химикал : Всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 814
 
Б.54. УТЕРОТРОФИЧНО  БИОЛОГИЧНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  ПРИ  
ГРИЗАЧИ : КРАТКОСРОЧНО  СКРИНИНГОВО  ИЗСЛЕДВАНЕ  
ЗА ЕСТРОГЕННИ  СВОЙСТВА  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на насоките  за 
изпитване  на ОИСР  (ТG) 440 (2007). През  1998 г. ОИСР  стартира  с 
висок  приоритет  дейност  по преразглеждане  на съществуващите  
указания  и по разработване  на нови  указания  за скрининг  и изпитвания  
за потенциални  нарушители  на функциите  на ендокринната  
система  (1). Един  от елементите  на дейността  беше  да се разработи  
указание  за изпитване  за утеротрофично  биологично  изследване  при 
гризачи . След  това утеротрофичното  биологично  изследване  при 
гризачи  бе предмет  на обширна  програма  за валидиране , включително  
съставянето  на подробен  информационен  документ  (2)(3) и 
провеждането  на обширни  вътрешно - и междулабораторни  
изследвания , за да се покаже  уместността  и възпроизводимостта  на 
биологичното  изследване  с мощен  референтен  естроген , слаби  
естрогенни  рецепторни  агонисти  и отрицателен  референтен  химикал  
(4)(5)(6)(7)(8)(9). Този  метод  за изпитване  Б.54 е резултат  от опита , 
натрупан  по време  на плана  на изпитването  за валидиране , и 
получените  по този начин  резултати  с естрогенни  агонисти . 
2. Утеротрофичното  биологично  изследване  е краткосрочно  скринингово  
изследване , появило  се през 1930-те години  (27)(28) и за пръв  път 
стандартизирано  за скрининг  от комитет  от експерти  през 1962 г. 
(32)(35). То се основава  на увеличаването  на теглото  на матката  или 
на утеротрофичен  отговор  (за преглед  вж. 29)). С него  се оценява  
способността  на даден  химикал  да проявява  биологична  активност , 
съответстваща  на агонисти  или антагонисти  на природни  естрогени  
(напр . 17ß-естрадиол ), но използването  му за откриване  на антагонисти  
е много  по-рядко  срещано , отколкото  за агонисти . Матката  отговаря  на 
естрогени  по два начина . Първоначален  отговор  е увеличението  на 
теглото  в резултат  на поглъщане  на вода . Този  отговор  е последван  
от наддаване  на тегло  в резултат  на растеж  на тъкан  (30). Отговорите  
на матката  при плъхове  и при мишки  са съпоставими  в качествено  
отношение . 
3. Това  биологично  изследване  служи  като скринингово  изследване  in 
vivo и неговото  прилагане  следва  да се разглежда  в контекста  на 
„Концептуалната  рамка  на ОИСР  за изпитване  и оценка  на 
химикали , нарушаващи  функциите  на ендокринната  система “ 
(Допълнение  2). В тази концептуална  рамка  утеротрофичното  
биологично  изследване  се съдържа  в равнище  3 като изследване  in 
vivo, предоставящо  данни  относно  единен  ендокринен  механизъм , т.е. 
естрогенност . 
4. Утеротрофичното  биологично  изследване  е предназначено  да бъде  
включено  в батерия  от изпитвания  in vitro  и in vivo  за установяване  
на химикали , които  имат  потенциала  да взаимодействат  с 
ендокринната  система , които  в крайна  сметка  водят  до оценки  на 
риска  за човешкото  здраве  или околната  среда . Програмата  за 
валидиране  на ОИСР  използва  както  силни , така и слаби  естрогенни  
агонисти , за да направи  оценка  на пригодността  на изследването  за 
идентифициране  на естрогенни  химикали  (4)(5)(6)(7)(8). По този 
начин , освен  добрата  вътрешно - и междулабораторна  възпроизвод­  
имост , беше  добре  показана  чувствителността  на изпитвателната  
процедура  за естрогенни  агонисти . 
5. По отношение  на отрицателните  химикали , само  един  „отрицателен “ 
референтен  химикал , който  вече беше  докладван  като отрицателен  от 
утеротрофично  изследване , както  и от изпитвания  in vitro  на 
свързването  към рецептори  и на рецептори , беше  включен  в 
програмата  за валидиране , но бяха  оценени  допълнителни  изпитв­  
ателни  данни , които  не са свързани  с програмата  на ОИСР  за 
валидиране , предоставящи  допълнителна  подкрепа  за специфичността  
на утеротрофичното  биологично  изследване  за скрининг  на естрогенни  
агонисти  (16).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 815
 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
6. Естрогенните  агонисти  и антагонисти  действат  като лиганди  за 
естрогенните  рецептори  α и β и съответно  могат  да активират  или да 
потискат  транскрипционното  действие  на рецепторите . Това  може  да 
има потенциал  да доведе  до опасност  за здравето , включително  до 
ефекти  върху  репродукцията  и развиващия  се организъм . Поради  
това съществува  необходимост  от бързо  извършване  на оценка  на 
даден  химикал  като възможен  естрогенен  агонист  или антагонист . 
Макар  и даващ  информация , афинитетът  на даден  лиганд  към даден  
естрогенен  рецептор  или към транскрипционно  активиране  на 
репортерни  гени  in vitro  е само  един  от няколкото  определящи  
фактори  за евентуален  риск . Други  определящи  фактори , зависещи  
най-малко  отчасти  от пътя  на прилагане  и изпитвания  химикал , 
могат  да включват  метаболитно  активиране  и деактивиране  при 
влизане  в тялото , разпределяне  в прицелни  тъкани  и клирънс  от орга­  
низма . Това  води  до необходимостта  от извършване  на скрининг  на 
потенциалното  действие  на даден  химикал  in vivo  при подходящи  
условия , освен  ако характеристиките  на химикала  по отношение  на 
абсорбция  — разпределение  — метаболизъм  — екскреция  (АРМЕ ) 
вече не дават  подходяща  информация . Отговорът  на маточните  
тъкани  на стимулирането  с естрогени  е бърз  и енергичен  растеж , 
особено  при лабораторни  гризачи , при които  еструсът  продължава  
около  4 дни. Различни  видове  гризачи , особено  плъховете , се 
използват  също  така широко  в изследванията  за токсичност  за 
характеризиране  на риска . Следователно  матката  при гризачите  е 
подходящ  прицелен  орган  за скрининг  in vivo  на естрогенни  
агонисти  и антагонисти . 
7. Настоящият  метод  за изпитване  се основава  на онези  протоколи , 
използвани  в изследването  на ОИСР  за валидиране , които  са 
показали , че са надеждни  и възпроизводими  във вътрешно - и межд­  
улабораторни  изследвания  (5)(7). Понастоящем  на разположение  
съществуват  два метода , а именно  метод  с овариектомизирани  
полово  зрели  женски  животни  (метод  с полово  зрели  животни ) и 
метод  с незрели  неовариектомизирани  животни  (метод  с незрели  
животни ). В програмата  на ОИСР  за изпитвания  за валидиране  е 
било  показано , че и двата  метода  са със сравнима  чувствителност  и 
възпроизводимост . Обаче  методът  с незрели  животни , тъй като те имат  
невредима  хипоталамус -хипофиза -гонадна  ос (ос ХХГ ), е в известен  
смисъл  по-неспецифичен , но покрива  по-широк  обхват  на изследване  
от метода  с полово  зрели  животни , тъй като може  да предизвика  
отговор  на химикали , които  взаимодействат  с оста ХХГ , а не просто  
с естрогенния  рецептор . Оста  ХХГ  при плъховете  започва  да функц­  
ионира  на около  15-дневна  възраст . Преди  това, пубертетът  не може  да 
се ускори  с третирания  като гонадотропин -освобождаващ  хормон  
(GnRH). Когато  женските  започнат  да достигат  пубертет , преди  
отварянето  на вагината , при женското  животно  ще има няколко  
скрити  цикли , които  не водят  до отваряне  на вагината  или овулация , 
но при които  има известни  хормонални  колебания . Ако даден  химикал  
стимулира  оста ХХГ  пряко  или непряко , в резултат  на това се 
получава  преждевременен  пубертет , ранна  овулация  и ускорено  
отваряне  на вагината . Такъв  ефект  имат  не само  химикали , които  
въздействат  на оста ХХГ , но и някои  хранителни  режими  с по- 
високи  нива  на енергия  от обмяна  на веществата  отколкото  други  
стимулират  растежа  и ускоряват  отвярянето  на вагината  без да са 
естрогенни . Такива  химикали  не биха  довели  до утеротрофичен  
отговор  при овариектомизирани  полово  зрели  животни , тъй като 
тяхната  ос ХХГ  не функционира . 
8. От съображения  за хуманно  отношение  към животните  следва  да се 
отдаде  предпочитание  на метода  с незрели  плъхове , като се избягва  
предварителна  хирургична  обработка  на животните  и се избягва  и 
възможно  неизползване  на онези  животни , при които  има показания  
за навлизане  в еструс  (вж. параграф  30). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 816
 
9. Утеротрофичният  отговор  не е изцяло  от естрогенен  произход , т.е. 
химикали , различни  от агонисти  или антагонисти  на естрогени , могат  
също  така да предизвикат  отговор . Например , сравнително  високи  дози  
на прогестерон , тестостерон  или различни  синтетични  прогестини  
могат  да доведат  до стимулиращ  отговор  (30). Всеки  отговор  може  
да бъде  анализиран  хистологично  за втвърдяване  и вроговяване  на 
вагината  (30). Независимо  от възможния  произход  на отговора , полож­  
ителният  резултат  от утеротрофичното  биологично  изследване  обик­  
новено  следва  да води  до предприемане  на действия  за допълнително  
изясняване . Допълнителни  доказателства  за естрогенност  могат  да се 
получат  от изследвания  in vitro , като например  изследвания  на 
свързването  към естрогенен  рецептор  и изследвания  на 
транскрипционно  активиране , или от други  изследвания  in vivо, като 
например  изследването  на женски  животни  в пубертет . 
10. Като  се има предвид , че утеротрофичното  биологично  изследване  
служи  като скринингово  изследване  in vivo , възприетият  подход  на 
валидиране  беше  в съответствие  както  със съображенията  за хуманно  
отношение  към животните , така и със стратегията  за поетапно  
изпитване . За тази цел усилията  бяха  насочени  към стриктно  
валидиране  на възпроизводимостта  и чувствителността  по отношение  
на естрогенността  — основен  проблем  за много  химикали  — докато  
малко  усилия  бяха  насочени  към компонента  антиестрогенност  на 
изследването . Беше  изпитан  само  един  антиестроген  със силна  
активност , тъй като броят  на химикалите  с ясен  антиестрогенен  
профил  (който  да не е неясен  поради  някаква  естрогенна  активност ) 
е много  ограничен . По този начин  настоящият  метод  за изпитване  е 
посветен  на естрогенния  протокол , докато  протоколът , описващ  
антагонистичния  режим  от изследването , е включен  в Ръководство  
(37). Възпроизводимостта  и чувствителността  на изследването  за 
химикали  с чисто  антиестрогенна  дейност  ще бъдат  по-ясно  
определени  по-късно , след  като процедурата  на изпитване  е била  
рутинно  използвана  за известно  време  и са идентифицирани  повече  
химикали  с този начин  на действие . 
11. Възприето  е всички  процедури , свързани  с животни , да съответстват  на 
местните  стандарти  за грижи  за животните ; описанията  на грижите  и 
третирането , изложени  по-долу , представляват  минимални  стандарти  за 
изпълнение  и се заменят  от местни  разпоредби , като например  
Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
22 септември  2010 г. относно  защитата  на животните , използвани  за 
научни  цели  (38). По-нататъшни  указания  за хуманното  отношение  
към животните  се дават  от ОИСР  (25).  
12. Както  при всички  изследвания , при които  се използват  живи  животни , 
от съществено  значение  е да се гарантира , че данните  са наистина  
необходими  преди  началото  на изследването . Например  две условия , 
при които  данните  могат  да се изискват , са: 
— висок  потенциал  за експозиция  (равнище  1 от Концептуалната  
рамка , допълнение  2) или признаци  за естрогенност  (равнище  2) 
за проучване  дали  такива  ефекти  могат  да настъпят  in vivo ; 
— ефекти , показващи  естрогенност  при изпитвания  in vivo  на равнище  
4 или 5 за доказване , че ефектите  са били  свързани  с естрогенен  
механизъм , който  не може  да бъде  изяснен  с помощта  на изпитване  
in vitro . 
13. Определенията , използвани  за този метод  за изпитване , са дадени  в 
допълнение  1. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 817
 
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
14. За чувствителността  на утеротрофичното  биологично  изследване  се 
разчита  на постановка  за изпитване  на животни , при която  хипот­  
аламус -хипофиза -гонадната  ос не е функционална , което  води  до 
ниски  ендогенни  нива  на циркулиращ  естроген . Това  ще осигури  
ниско  изходно  тегло  на матката  и максимален  обхват  на отговор  на 
прилаганите  естрогени . Две състояния  на чувствителност  на естроген  
на женското  животно  при гризачите  отговорят  на това изискване : 
i) незрели  женски  животни  след  отбиването  и преди  пубертета , и 
ii) млади  полово  зрели  женски  животни  след  овариектомия , с предо­  
ставено  достатъчно  време  за регресивно  развитие  на маточните  
тъкани . 
15. Изпитваният  химикал  се прилага  всекидневно  по орален  път през 
сонда  или чрез подкожно  инжектиране . Постепенни  дози  от 
изпитвания  химикал  се прилагат  в най-малко  две третирани  групи  
(вж. параграф  33 за насоки ) от опитни  животни , като се използва  по 
една  доза за група  и период  на прилагане  от три последователни  дни за 
метода  с незрели  животни  и минимален  период  на прилагане  от три 
последователни  дни за метода  с полово  зрели  животни . Животните  се 
подлагат  на аутопсия  приблизително  24 часа след  последната  доза. За 
естрогенни  агонисти  средната  маса  на матката  на третираните  групи  
животни , свързана  с носителя , се оценява  за статистически  значимо  
нарастване . Статистически  значимото  нарастване  на средната  маса  на 
матката  на дадена  изпитвана  група  показва  положителен  отговор  при 
това биологично  изследване . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на животински  вид 
16. Могат  да се използват  обичайно  използваните  лабораторни  породи  
гризачи . Например  по време  на валидирането  са били  използвани  
плъхове  от породи  Sprague-Dawley и Wistar. Породи , при които  за 
матката  е известно  или се подозира , че дава по-слаб  отговор , не 
трябва  да се използват . Лабораторията  следва  да демонстрира  чувств­  
ителността  на използваната  порода , както  е описано  в параграфи  26 
и 27. 
17. Плъхове  и мишки  се използват  редовно  за утеротрофично  биологично  
изследване  от 1930-те години  насам . Изследванията  на ОИСР  за 
валидиране  са били  извършвани  само  с плъхове  въз основа  на 
схващането , че се очаква  двата  вида  да са равностойни  и поради  
това един  вид трябва  да бъде  достатъчен  за валидиране  в световен  
мащаб , с оглед  икономия  на ресурси  и запазване  на животни . 
Плъхът  е избраният  вид при повечето  изследвания  на токсичността  
за репродукцията  и за развиващия  се организъм . Като  се има 
предвид , че съществува  обширна  база данни  за минали  периоди  за 
мишки  и, във връзка  с това, за да се разшири  обхватът  на утеротроф­  
ичното  биологично  изследване  при гризачи  така, че като изпитван  вид 
да могат  да бъдат  използвани  мишки , е било  проведено  ограничено  
последващо  изследване  за валидиране  върху  мишки  (16). В съотв­  
етствие  с първоначалното  намерение  за икономии  на ресурси  и 
запазване  на животни  е избран  свързващ  подход  с ограничен  брой  
изпитвани  химикали , участващи  лаборатории  и без изследване  на 
кодирани  проби . Това  свързващо  изследване  за валидиране  показва , 
че в качествено  и количествено  отношение  при утеротрофичното  
биологично  изследване  на овариектомизирани  млади  полово  зрели  
мишки  има голямо  съответствие  между  данните , получени  при 
плъхове , и тези, получени  при мишки . Когато  резултатът  от дадено  
утеротрофично  биологично  изследване  може  да бъде  предварителен  
по отношение  на дългосрочно  изследване , това позволява  в двете  
изследвания  да се използват  животни  от същата  порода  и източник . 
Свързващият  подход  беше  ограничен  до овариектомизирани  мишки  и 
докладът  не предоставя  набор  от устойчиви  данни  за валидиране  на 
модел  с незрели  животни , следователно  моделът  с незрели  животни  с 
използване  на мишки  не се разглежда  в обхвата  на настоящия  метод  за 
изпитване . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 818
 
18. Следователно  в някои  случаи  могат  да бъдат  използвани  мишки  вместо  
плъхове . За този вид следва  да бъде  направена  обосновка  въз основа  на 
токсикологични , фармакокинетични  и/или други  критерии . За мишки  е 
възможно  да са необходими  изменения  на протокола . Например , конс­  
умацията  на храна  на телесно  тегло  при мишки  е по-висока  от тази на 
плъховете  и следователно  съдържанието  на фитоестрогени  в храната  
при мишките  следва  да бъде  по-ниско  при мишките , отколкото  при 
плъховете  (9)(20)(22).  
Условия  на отглеждане  и хранене  
19. Всички  процедури  трябва  да са в съответствие  с местните  стандарти  за 
полагане  на грижи  за лабораторни  животни . Тези  описания  на грижите  
и третирането  представляват  минимални  стандарти  и се заменят  от 
местни  разпоредби , като например  Директива  2010/63/ ЕС на 
Европейския  парламент  и на Съвета  от 22 септември  2010 г. относно  
защитата  на животните , използвани  за научни  цели  (38). Температурата  
в стаята  на опитните  животни  трябва  да бъде  22 °C (с приблизително  
отклонение  ± 3 °C). Относителната  влажност  следва  да бъде  най-малко  
30 % и е препоръчително  тя да не надвишава  70 % освен  по време  на 
почистване  на помещението . Целта  следва  да бъде  относителна  
влажност  50—60 %. Осветлението  трябва  да бъде  изкуствено . 
Ежедневната  последователност  при осветлението  трябва  да е 12 часа 
светлина , 12 часа тъмнина . 
20. Лабораторна  храна  и питейна  вода  трябва  да се предоставят  ad libitum . 
Млади  полово  зрели  животни  могат  да бъдат  отглеждани  в 
индивидуални  клетки  или да се разпределят  в група  до три животни  
в клетка . Поради  младата  възраст  на незрелите  животни , за тях се 
препоръчва  отглеждане  на групи  в общи  клетки . 
21. За високите  нива  на фитоестрогени  в лабораторни  храни  е известно , че 
увеличават  теглото  на матката  при гризачи  в степен , достатъчна , за да 
попречи  на утеротрофичното  биологично  изследване  (13)(14)(15). 
Високите  нива  на фитоестрогени  и енергия  от обмяна  на веществата  
в лабораторни  храни  могат  също  така да доведат  до ранен  пубертет , 
ако се използват  незрели  животни . Наличието  на фитоестрогени  
произтича  основно  от включването  на продукти  от соя и люцерна  в 
лабораторните  храни  и е доказано , че концентрациите  на фито­  
естрогени  варират  от една  партида  стандартни  лабораторни  храни  
към друга  (23). Телесното  тегло  е важна  променлива , тъй като колич­  
еството  на консумираната  храна  е свързано  с телесно  тегло . Следов­  
ателно  действителната  доза фитоестрогени , консумирана  по същия  
хранителен  режим , може  да варира  при различните  видове  и според  
възрастта  (9). При незрели  женски  плъхове  консумацията  на храна  на 
телесно  тегло  може  да е приблизително  два пъти  по-висока  от тази при 
овариектомизирани  млади  полово  зрели  женски  животни . При млади  
полово  зрели  мишки  консумацията  на храна  на телесно  тегло  може  да 
е приблизително  четири  пъти  по-висока  от тази при овариект­  
омизирани  млади  полово  зрели  женски  плъхове . 
22. Резултатите  от утеротрофичното  биологично  изследване  (9)(17)(18)(19) 
обаче  сочат , че ограничени  количества  на фитоестрогени  в 
хранителния  режим  са приемливи  и не намаляват  чувствителността  
на биологичното  изследване . Като  насока , равнищата  на фитоестрогени  
в хранителния  режим  не следва  да надвишават  350 μg еквивалент  на 
генистеин  на грам  лабораторни  храни  за незрели  женски  плъхове  от 
породите  Sprague Dawley и Wistar (6)(9). Такива  хранителни  режими  
също  трябва  да са подходящи , когато  се изпитват  овариектомизирани  
млади  полово  зрели  плъхове , тъй като консумацията  на храна  на 
телесно  тегло  е по-малка  при младите  полово  зрели  животни  в 
сравнение  с незрелите  животни . Ако трябва  да бъдат  използвани  
овариектомизирани  полово  зрели  мишки  или по-чувствителни  към 
фитоестрогени  плъхове , следва  да бъде  взето  предвид  пропорционално  
намаление  на нивата  на фитоестрогени  в хранителния  режим  (20). 
Освен  това, различията  в наличната  енергия  от обмяната  на веществата  
при различните  хранителни  режими  може  да доведе  до измествания  на 
началото  на пубертета  във времето  (21)(22).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 819
 
23. Преди  проучването  се изисква  внимателен  подбор  на хранителнен  
режим  без повишени  нива  на фитоестрогени  (за насоки  вж. (6)(9)) 
или енергия  от обмяна  на веществата , които  могат  да доведат  до невъ­  
зможност  за разграничаване  на резултатите  (15)(17)(19)(22)(36). За 
гарантиране  на правилното  изпълнение  на използваната  от 
лабораторията  система  за изпитване , както  е посочено  в параграфи  
26 и 27, е важно  да бъде  извършена  проверка  на тези два фактора . 
Като  предпазна  мярка  в съответствие  с добрата  лабораторна  практика  
(ДЛП ), следва  да бъдат  вземани  представителни  проби  от всяка  
партида  храни , давани  по време  на изследването , за евентуален  
анализ  за съдържание  на фитоестрогени  (напр . в случай  на висока  
стойност  на теглото  на матката  в сравнение  с контролни  данни  от 
предходни  периоди , или на неадекватен  отговор  на референтния  
естроген , 17алфа -етинилестрадиол ). Като  част от проучването  трябва  
да бъдат  анализирани  аликвотни  части , или същите  да бъдат  замразени  
при температура  — 20 °C или по такъв  начин , че да се предотврати  
разлагане  на пробата  преди  анализа . 
24. Някои  материали  за постилане  могат  да съдържат  срещани  в природата  
естрогенни  или антиестрогенни  химикали  (напр . за царевичните  
кочани  е известно , че засягат  цикъла  при плъхове  и изглежда , че 
имат  антиестрогенно  действие ). Избраният  материал  за постилане  
трябва  да съдържа  минимално  ниво  на фитоестрогени . 
Подготовка  на животните  
25. Опитни  животни  без видими  признаци  на заболяване  или физически  
отклонения  се разпределят  на случаен  принцип  в контролните  и 
третираните  групи . Клетките  трябва  да бъдат  подредени  по такъв  
начин , че възможните  ефекти  в резултат  на местоположението  на 
клетката  да бъдат  сведени  до минимум . Животните  трябва  да бъдат  
индивидуално  идентифицирани . За предпочитане  е незрелите  
животни  да бъдат  поставяни  в клетки  с майки  или приемни  майки  
до отбиване  по време  на аклиматизацията . Периодът  на аклиматизация  
преди  началото  на изследването  следва  да е около  5 дни за млади  
полово  зрели  животни  и за незрели  животни , доставени  с майки  или 
приемни  майки . Ако незряло  животно  е получено  като отбито  без 
майка , може  да е необходима  по-кратка  продължителност  на периода  
на аклиматизация , тъй като дозирането  трябва  да започне  веднага  след  
отбиването  (вж. параграф  29).  
ПРОЦЕДУРА  
Проверка  на пригодността  на лабораторията  
26. Могат  да бъдат  използвани  два различни  варианта  за проверка  на 
пригодността  на лабораторията : 
— Периодична  проверка , основаваща  се на изследване  с положителна  
контрола  и изходна  стойност  (вж. параграф  27). Поне  веднъж  на 
всеки  6 месеца  и всеки  път, когато  има промяна , която  може  да 
повлияе  на провеждането  на изследването  (например  нова  
рецептура  за хранителния  режим , промяна  в персонала , отговорен  
за извършването  на дисекцията , промяна  на породата  на животните  
или на доставчика  и др.), реагирането  на системата  на изпитване  
(животински  модел ) следва  да бъде  проверено , като се използва  
подходяща  доза (основаваща  се на изследването  с положителна  
контрола  и изходна  стойност , описано  в параграф  27) на 
референтен  естроген : 17α-етинилестрадиол  (CAS № 57-63-6) (EE).  
— Използване  на паралелни  контроли  чрез включване  на група , 
третирана  с подходяща  доза от референтен  естроген  във всяко  
изследване . 
Ако системата  не отговаря  според  очакванията , условията  на опита  
трябва  да бъдат  проверени  и съответно  изменени . Препоръчва  се 
дозата  от референтния  естроген , която  ще се използва  и при двата  
подхода , да бъде  приблизително  ED70—ED80.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 820
 
27. Изследване  с положителна  контрола  и изходна  стойност  — преди  
дадена  лаборатория  да проведе  за първи  път изследване  съгласно  
настоящия  метод  за изпитване , пригодността  на лабораторията  следва  
да бъде  доказана  чрез изпитване  на реагирането  на животинския  модел  
чрез установяване  на зависимостта  доза-отговор  по отношение  на 
референтен  естроген : 17α-етинилестрадиол  (CAS № 57-63-6) (EE) с 
най-малко  четири  дози . Отговорът , изразяващ  се в теглото  на 
матката , ще бъде  сравнен  с установените  данни  за минали  периоди  
(вж. позоваване  (5). Ако това изследване  с положителна  контрола  и 
изходна  стойност  не даде  очакваните  резултати , условията  на опита  
трябва  да бъдат  проверени  и изменени . 
Брой  и състояние  на животните  
28. Всяка  третирана  и всяка  контролна  група  трябва  да включва  поне  6 
животни  (за протоколи  от методите  с незрели  и с овариектомизирани  
полово  зрели  животни ). 
Възраст  на незрелите  животни  
29. За утеротрофичното  биологично  изследване  с незрели  животни  следва  
да бъде  определен  денят  на раждане . Дозирането  трябва  да започне  
достатъчно  рано , за да се гарантира , че в края  на прилагането  на 
изпитвания  химикал  физиологичното  увеличение  на ендогенните  
естрогени , свързано  с пубертета , все още не е настъпило . От друга  
страна , съществуват  доказателства , че много  младите  животни  могат  
да бъдат  по-малко  чувствителни . За определяне  на оптималната  
възраст  всяка  лаборатория  трябва  да вземе  предвид  свои  собствени  
съпътстващи  данни  относно  съзряването . 
Като  обща  насока , дозирането  при плъховете  може  да започне  
незабавно  след  ранното  отбиване  през постнатален  ден 18 (като 
денят  на раждането  се счита  за постнатален  ден 0). За предпочитане  
е дозирането  при плъхове  да бъде  приключено  през постнатален  ден 21 
и във всички  случаи  преди  постнатален  ден 25, тъй като след  тази 
възраст  хипоталамус -хипофиза -гонадната  ос започва  да функционира  
и нивата  на ендогенния  естроген  може  да започнат  да нарастват  със 
съпътстващо  увеличение  на средните  стойности  на теглото  на матката  
и увеличение  на стандартните  отклонения  за групата  (2)(3)(10)(11)(12).  
Процедура  за овариектомия  
30. При овариектомизираните  женски  плъхове  и мишки  (третирани  и 
контролни  групи ) овариектомията  трябва  да се извърши  във възраст  
между  6 и 8 седмици . За плъхове  трябва  да изминат  минимум  14 дни 
между  овариектомията  и първия  ден на прилагането , за да се даде  
възможност  на матката  да достигне  стабилно  минимално  изходно  
тегло . За мишки  трябва  да изминат  минимум  7 дни между  овариект­  
омията  и първия  ден на прилагането . Тъй като малки  количества  
овариална  тъкан  са достатъчни  за производството  на значителни  нива  
на циркулиращи  естрогени  (3), животните  трябва  да бъдат  изпитани , 
преди  да бъдат  използвани , чрез наблюдение  на епителиални  клетки , 
взети  с тампон  от влагалището , в продължение  най-малко  на пет 
последователни  дни (напр . дни 10—14 след  овариектомията  при 
плъхове ). Ако при животните  има показания  за навлизане  в еструс , 
животните  не трябва  да се използват . По-нататък , по време  на 
аутопсията , местата  на срезовете  на яйчниците  следва  да бъдат  
изследвани  за наличие  на овариална  тъкан . При наличие , животното  
не трябва  да се използва  при изчисленията  (3). 
31. Процедурата  по овариектомия  започва  с животното , лежащо  по корем , 
след  като е било  правилно  анестезирано . Инцизията  за отваряне  на 
задностраничната  коремна  стена  следва  да бъде  с дължина  приблиз­  
ително  1 cm надлъжно  по средата  между  долния  ръб на ребрата  и 
хълбочния  гребен , и няколко  милиметра  странично  от страничния  
ръб на поясния  мускул . Яйчникът  трябва  да се извади  от коремната  
кухина  върху  асептично  поле . Яйчникът  следва  да бъде  отстранен  при 
свързването  на яйцепровода  с тялото  на матката . След  потвърждаване , 
че не се наблюдава  силно  кръвотечение , коремната  стена  трябва  да 
бъде  затворена  с хирургичен  шев и кожата  трябва  да бъде  затворена  
с автоматични  скоби  (autoclips) или подходящ  хирургичен  шев. 
Точките  на лигатурата  са представени  схематично  на фигура  1. 
Следва  да се използва  подходящо  постоперативно  обезболяване , 
както  е препоръчано  от ветеринар  с опит  при грижите  за гризачи . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 821
 
Телесно  тегло  
32. При метода  с овариектомизирани  полово  зрели  животни  телесното  
тегло  и теглото  на матката  не са взаимосвързани , тъй като теглото  
на матката  се влияе  от хормони  като естрогените , но не и от 
фактори  на растежа , които  регулират  размерите  на тялото . Обратно , 
при модела  с незрели  животни  телесното  тегло  е свързано  с теглото  на 
матката , докато  животното  съзрява  (34). Следователно  в началото  на 
изследването  вариациите  в теглото  на животните , използвани  при 
модела  с незрели  животни , следва  да са минимални  и да не превишават  
± 20 % от средното  тегло . Това  означава , че големината  на котилото  
следва  да бъде  стандартизирана  от снабдителя , за да се гарантира , че 
поколението  от различни  майки  ще бъде  хранено  приблизително  по 
еднакъв  начин . Животните  трябва  да бъдат  разпределени  към групи  
(както  контролни , така и третирани ) чрез случайно  разпределение  по 
тегло , така че средното  телесно  тегло  във всяка  група  да не е статист­  
ически  различно  от това в която  и да е друга  група . Следва  да се 
обърне  внимание , за да се избегне  разпределяне  на животни  от едно  
котило  към същата  третирана  група , доколкото  това е практически  
възможно , без да се увеличава  броят  на котилата , които  да се 
използват  за проучването . 
Дозиране  
33. С цел да се установи  дали  даден  изпитван  химикал  може  да има 
естрогенно  действие  in vivo , обичайно  са достатъчни  две групи  с 
определена  доза и една  контролна  и затова  тази постановка  е предп­  
очитана  от съображения  за хуманно  отношение  към животните . Ако 
целта  е да се получи  крива  доза-отговор  или да се екстраполира  към 
по-ниски  дози , необходими  са най-малко  3 групи  с определена  доза. 
Ако се изисква  информация  извън  тази за естрогенната  активност  (като 
например  оценка  на ефикасността ), трябва  да бъде  взета  под внимание  
отделна  схема  на дозиране . С изключение  на третиране  с изпитвания  
химикал , животните  в контролната  група  трябва  да бъдат  отглеждани  
по идентичен  начин  на този при животните  от изпитваната  група . Ако 
се използва  носител  при прилагането  на изпитвания  химикал , 
контролната  група  трябва  да получава  същото  количество  носител , 
което  се използва  при третираните  групи  (или най-високият  обем , 
използван  при третираните  групи , ако обемът  е различен  при разл­  
ичните  групи ). 
34. Целта  в случая  на утеротрофичното  биологично  изследване  е да се 
изберат  дози , които  гарантират  оцеляването  на животните , и които  
са без значителна  токсичност  или дистрес  за животните  след  три 
последователни  дни на прилагане  на химикала  до максимална  доза 
от 1 000 mg/kg/ ден. Всички  нива  на доза следва  да се предлагат  и 
подбират , като се имат  предвид  всички  достъпни  токсикологични  и 
токсикокинетични  данни  за изпитвания  химикал  или за свързани  с 
него  материали . За най-високото  ниво  на доза следва  първо  да се 
вземе  под внимание  стойността  на LD50 и/или информацията  за 
остра  токсичност  с цел да се избегне  смърт , силно  страдание  или 
дистрес  при животните  (24)(25)(26). Най-високата  доза следва  да 
представлява  максималната  допустима  доза (МДД ); изследване , 
проведено  при ниво  на доза, предизвикало  положителен  
утеротрофичен  отговор , също  би било  прието . Като  скрининг , големи  
интервали  (напр . половин  логаритмична  единица , отговаряща  на 
кратност  на дозата , равна  на 3,2, или дори  до една  логаритмична  
единица ) между  дозиранията  са общоприемливи . Ако няма  достъпни  
подходящи  данни , може  да се проведе  изследване  за определяне  на 
обхвата , което  да подпомогне  определянето  на използваните  дози . 
35. Като  алтернатива , ако естрогенната  ефикасност  на даден  агонист  може  
да бъде  оценена  от данни  in vitro  (или in silico ), тези данни  могат  да 
бъдат  взети  под внимание  при избора  на доза. Например , количеството  
на изпитвания  химикал , който  би произвел  утеротрофичен  отговор , 
който  да е равностоен  на референтния  агонист  (етинилестрадиол ) се 
оценява  по неговата  относителна  ефикасност  in vitro  по отношение  на 
етинилестрадиол . Най-високата  доза на изпитване  ще бъде  приложена  
като кратна  на тази равностойна  доза с кратност  напр . 10 или 100.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 822
 
Съображения  при определянето  на обхвата  
36. Ако е необходимо , може  да се извърши  предварително  изследване  за 
определяне  на обхвата , с малко  на брой  животни . В това отношение , 
Ръководство  на ОИСР  № 19 (25) може  да се използва  за определяне  на 
клиничните  признаци , които  показват  токсичност  или дистрес  за 
животните . Ако е осъществимо  в рамките  на това изследване  за 
определяне  на обхвата  след  три дни от прилагането , матките  могат  
да бъдат  изрязани  и претеглени  приблизително  24 часа след  последната  
доза. Тези  данни  биха  могли  да се използват  след  това за подпомагане  
при планирането  на основното  изследване  (за избор  на приемлива  
максимална  и по-ниски  дози , и за препоръка  относно  броя  на 
групите  с определена  доза). 
Прилагане  на дозите  
37. Изпитваният  химикал  се прилага  по орален  път през сонда  или чрез 
подкожно  инжектиране . При избора  на пътя  на прилагане  следва  да 
бъдат  взети  под внимание  съображенията  за хуманно  отношение  към 
животните , както  и токсикологичните  аспекти , като например  
относимост  към пътя  на експозиция  на химикала  при хора  (напр . 
относимост  на орален  път през сонда  към експозиция  чрез поглъщане , 
или на подкожно  инжектиране  към вдишване  или към дермална  
адсорбция ), физичните /химични  свойства  на изпитвания  материал  и 
особено  съществуващата  токсикологична  информация  и данни  за мета­  
болизма  и кинетиката  (напр . необходимост  да се избегне  ефектът  на 
първото  преминаване , по-добра  ефикасност  чрез конкретен  път). 
38. Препоръчва  се, винаги  когато  е възможно , първо  да се разглежда  
възможността  за прилагането  на воден  разтвор /суспензия . Но тъй 
като повечето  естрогенни  лиганди  или техните  метаболитни  
прекурсори  са хидрофобни , най-често  използваният  подход  е 
използване  на разтвор /суспензия  в масло  (напр . царевично , фъстъчено , 
сусамово  или маслиново  масло ). Тези  масла  обаче  имат  различно  
съдържание  на калории  и на мазнини , като с това носителят  може  да 
засегне  общия  прием  на енергия  от обмяната  на веществата , като по 
този начин  потенциално  се променят  измерените  крайни  точки , като 
теглото  на матката , особено  при метода  с незрели  животни  (33). 
Затова , преди  изследването  всеки  носител , който  ще бъде  използван , 
следва  да се изпита  върху  контроли  без носители . Изпитваните  
химикали  могат  да бъдат  разтворени  в минимално  количество  95 % 
етанол  или други  подходящи  разтворители , и разредени  до окончат­  
елните  работни  концентрации  в изпитвания  носител . Токсичните  
характеристики  на разтворителя  трябва  да бъдат  известни  и следва  
да се изпитат  в отделна  контролна  група  само  на разтворител . Ако 
изпитваният  химикал  се счита  за стабилен , може  да се използва  
слабо  нагряване  и енергично  механично  действие  за подпомагане  на 
разтварянето  на изпитвания  химикал . Трябва  да бъде  определена  
стабилността  на изпитвания  химикал  в носителя . Ако изпитваният  
химикал  е стабилен  за периода  на изследването , тогава  може  да бъде  
приготвена  една  начална  аликвотна  част от изпитвания  химикал , и 
определените  разреждания  на дозата  да се приготвят  всеки  ден. 
39. Графикът  за дозиране  ще зависи  от използвания  модел  (вж. параграф  
29 за модела  с незрели  животни  и параграф  30 за модела  с овариект­  
омизирани  полово  зрели  животни ). Незрелите  женски  плъхове  се 
дозират  с изпитвания  химикал  ежедневно  в продължение  на три после­  
дователни  дни. Тридневно  третиране  се препоръчва  и за овариект­  
омизирани  женски  плъхове , но по-продължителната  експозиция  е 
приемлива  и може  да доведе  до подобрено  откриване  на слабо  
активни  химикали . При овариектомизираните  женски  мишки  продълж­  
ителност  на прилагане  от 3 дни следва  да е достатъчна , без да има 
значително  предимство  при удължаване  на срока  до седем  дни за 
силни  естрогенни  агонисти , но тази връзка  не е доказана  за слаби  
естрогени  в изследването  за валидиране  (16) и следователно  
дозирането  при овариектомизирани  полово  зрели  мишки  следва  да 
бъде  удължено  до 7 последователни  дни.Дозата  следва  да се дава по 
едно  и също  време  всеки  ден. Те трябва  да бъдат  коригирани , колкото  
е необходимо , за да се поддържа  постоянно  ниво  на доза на телесно  
тегло  на животното  (напр . mg изпитван  химикал  на kg телесно  тегло  
на ден). По отношение  на изпитвания  обем , неговото  вариране  на 
основа  телесно  тегло  следва  да се сведе  до минимум  чрез регулиране  
на концентрацията  на дозирания  разтвор  с цел да се осигури  постоянен  
обем  на основа  телесно  тегло  на всички  нива  на доза и за всеки  път на 
прилагане . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 823
 
40. Когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез хранене  през сонда , това 
следва  да става  чрез еднократна  дневна  доза за животното  през 
стомашна  тръба  или подходяща  интубационна  канюла . Максималният  
обем  течност , който  може  да бъде  въведен  еднократно , зависи  от 
телесното  тегло  на изпитваното  животно . Следва  да се спазват  
местните  насоки  за грижи  за животните , но обемът  не следва  да 
превишава  5 ml/kg телесно  тегло , освен  в случай  на водни  разтвори , 
където  могат  да бъдат  използвани  10 ml/kg телесно  тегло . 
41. Когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез подкожно  инжектиране , 
това следва  да се прави  с една  дневна  доза. В дорзално -скапуларната  
или поясната  област  дозите  трябва  да се прилагат  посредством  
стерилна  игла  (напр . 23G или 25G) и туберкулинова  спринцовка . 
Бръсненето  на мястото  на инжектиране  е по избор . Всякакви  загуби , 
изтичане  на мястото  на инжектиране  или непълно  дозиране  трябва  да 
бъдат  записвани . Общото  количество  инжектиран  обем  на плъх  на ден 
не трябва  да надхвърля  5 ml/kg телесно  тегло , разделени  на 2 места  на 
инжектиране , освен  в случаите , когато  се прилагат  водни  разтвори , при 
които  могат  да бъдат  използвани  10 ml на kg телесно  тегло . 
Наблюдения  
Общи  и клинични  наблюдения  
42. Общи  клинични  наблюдения  следва  да бъдат  извършвани  поне  един  
път дневно  и по-често , когато  се наблюдават  признаци  на токсичност . 
Наблюденията  следва  да се извършват  за предпочитане  по едно  и също  
време  всеки  ден и като се има предвид  върховият  период  на 
предвидените  ефекти  след  получаване  на дозата . Всички  животни  
следва  да бъдат  наблюдавани  за смъртност , заболеваемост  и общи  
клинични  признаци  като промяна  в поведението , кожата , козината , 
очите , мукозните  мембрани , поява  на секреция  и екскреция , както  и 
автономна  активност  (напр . сълзене , пилоерекция , промяна  в 
големината  на зениците , необичаен  начин  на дишане ). 
Телесно  тегло  и консумация  на храна  
43. Всички  животни  трябва  да бъдат  претегляни  дневно  с точност  до 0,1 g, 
като се започне  точно  преди  започване  на третирането , т.е., когато  
животните  се разпределят  на групи . Като  незадължително  измерване , 
количеството  на консумираната  храна  през периода  на третиране  може  
да бъде  измерено  за отделната  клетка  чрез претегляне  на хранилката . 
Резултатите  за консумацията  на храна  следва  да бъдат  изразени  в 
грамове  на плъх  дневно . 
Дисекция  и измерване  на теглото  на матката  
44. Двадесет  и четири  часа след  последното  третиране  плъховете  се 
умъртвяват  по хуманен  начин . В идеалния  случай  аутопсията  се 
извършва  на случаен  принцип  между  различните  групи , за да се 
избегне  поставянето  на дадена  група  на първо  или последно  място , 
което  може  леко  да повлияе  на данните . Целта  на биологичното  
изследване  е да се измери  теглото  на матката  както  в мокро  състояние , 
така и след  изсушаване . Мокрото  тегло  включва  матката  и 
съдържанието  на луминална  течност . Теглото  след  изсушаване  се 
изчислява  след  като съдържанието  луминална  течност  в матката  бъде  
изразено  и отстранено . 
45. Преди  дисекцията  при незрели  животни  се преглежда  състоянието  на 
отвора  на вагината . Процедурата  по дисекцията  започва  с отварянето  
на коремната  стена , като се започне  при лонното  съчленение . След  
това рогът  на матката  и яйчниците , ако са налични , се отделят  от 
дорзалната  коремна  стена . Пикочният  мехур  и уретерите  се 
отстраняват  от вентралната  и страничната  страна  на матката  и влагал­  
ището . Влакнестите  сраствания  между  ректума  и влагалището  се 
отделят , докато  бъде  идентифицирана  точката  на свързване  на отвора  
на влагалището  и кожата  на перинеума . Матката  и влагалището  се 
отделят  от тялото  чрез инцизия  на стената  на влагалището  малко  над ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 824
 
точката  на свързване  с кожата  на перинеума , както  е показано  на 
фигура  2. Матката  следва  да бъде  отделена  от тялото  чрез леко  
срязване  на маточния  мезентерий  в мястото  на закрепване  по цялата  
дължина  на дорзолатералния  аспект  на всеки  рог на матката . След  като 
матката  бъде  извадена  от тялото , нейната  обработка  трябва  да бъде  
достатъчно  бърза , за да се избегне  изсушаване  на тъканите . Загубата  
на тегло  поради  изсушаване  става  по-значима  при малки  тъкани  като 
матката  (23). Ако яйчниците  са налични , те се отстраняват  при 
яйцепровода , като се избягва  загубата  на луминална  течност  от рога 
на матката . Ако животното  е било  овариектомизирано , местата  на 
срезовете  следва  да бъдат  изследвани  за наличие  на овариална  тъкан . 
Излишната  мазнина  и съединителна  тъкан  трябва  да се почисти . Влаг­  
алището  се отстранява  от матката  точно  под шийката  на матката , така 
че шийката  на матката  остава  с тялото  на матката , както  е показано  на 
фигура  2. 
46. Всяка  матка  следва  да бъде  прехвърлена  в индивидуално  маркиран  и 
претеглен  съд (напр . блюдо  „Петри “ или пластмасово  тегловно  блюдо ) 
внимателно , за да се избегне  изсушаване  преди  претеглянето  (напр . в 
контейнера  може  да бъде  поставена  филтърна  хартия , леко  напоена  с 
физиологичен  разтвор ). Матката  с луминалната  течност  се претегля  с 
точност  до 0,1 mg ( мокро  тегло  на матката ). 
47. След  това всяка  матка  се обработва  индивидуално  за отстраняване  на 
луминалната  течност . И двата  рога на матката  се пробиват  или срязват  
надлъжно . Матката  се поставя  върху  леко  овлажнена  филтърна  хартия  
(например  Уотман  № 3) и леко  се притиска  с втора  леко  овлажнена  
филтърна  хартия  за цялостно  премахване  на луминалната  течност . 
Матката  без луминалната  течност  се претегля  с точност  до 0,1 mg 
(тегло  на матката  в изсушено  състояние ). 
48. Теглото  на матката  при прекратяване  може  да бъде  използвано , за да 
се гарантира , че не е била  превишена  подходящата  възраст  на 
невредимия  незрял  плъх , но въпреки  това данните  от минали  
периоди  за породата  плъхове , използвана  от лабораторията , са от 
решаващо  значение  в това отношение  (вж. параграф  56 за тълкуване  
на резултатите ). 
Незадължителни  изследвания  
49. След  претеглянето  матката  може  да се фиксира  в 10 % неутрален  
буфериран  формалинов  разтвор , за хистопатологично  изследване  след  
оцветяване  с хематоксилин  и еозин . Влагалището  може  да бъде  
съответно  изследвано  (вж. параграф  9). В допълнение  може  да бъде  
направено  морфометрично  измерване  на ендометриалния  епител  за 
количествено  сравнение . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
50. Данните  от изследването  следва  да включват : 
— броя  на животните  в началото  на изпитването , 
— броя  и идентичността  на намерените  мъртви  животни  по време  на 
изследването  или умъртвени  по хуманни  съображения , както  и 
датата  и часа на всяка  смърт  или умъртвяване  на животните  по 
хуманен  начин , 
— броя  и идентичността  на животните , показващи  признаци  на токс­  
ичност , и описание  на наблюдаваните  признаци  на токсичност , 
включително  времето  им на настъпване , продължителността  и 
силата  на всички  токсични  ефекти , и 
— броя  и идентичността  на животните , които  показват  всякакви  
увреждания , и описание  на типа  на уврежданията . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 825
51. Индивидуалните  данни  за животните  следва  да се регистрират  за 
телесното  тегло , мокрото  тегло  на матката  и теглото  на матката  в 
изсушено  състояние . Следва  да се използват  статистически  анализи  с 
едностранна  критична  област  за агонисти , за да се определи  дали  прил­  
агането  на изпитван  химикал  е довело  до статистически  значимо  
(p < 0,05) увеличаване  на теглото  на матката . Следва  да се извършат  
подходящи  статистически  анализи , за да се изследват  свързаните  с 
третирането  изменения  в теглото  на матката  в изсушено  състояние  и 
в мокрото  тегло  на матката . Например , данните  могат  да бъдат  
оценени  чрез подход  с ковариационен  анализ  (ANCOVA) с телесното  
тегло  при аутопсия  като ковариант . Преди  анализа  на данните , върху  
данните  за матката  може  да бъде  направена  логаритмична  транс­  
формация  за стабилизиране  на дисперсията . Изпитването  на Dunnett 
и Hsu е подходящо  за сравнения  по двойки  на групите  с определена  
доза с контролите  на носител , и за изчисляване  на доверителни  
интервали . Графики  на стандартизирани  остатъци  могат  да се 
използват  за откриване  на евентуални  стойности , силно  различаващи  
се от нормалните , и за оценка  на хомогенността  на дисперсиите . Тези  
процедури  бяха  приложени  в програмата  на ОИСР  за валидиране , с 
използване  на PROC GLM в SAS (Statistical Analysis System) (SAS 
Institute, Cary, NC), версия  8 (6)(7).  
52. Заключителният  доклад  включва : 
Извършваща  изпитвания  лаборатория : 
— Отговорен  персонал  и неговите  отговорности , свързани  с 
обучението  
— Данни  от изпитването  с положителна  контрола  и референтна  
стойност  и периодични  данни  от положителни  контроли  (вж. 
параграфи  26 и 27) 
Изпитван  химикал : 
— Характеризиране  на изпитваните  химикали  
— Физична  природа  и, където  е относимо , физични  и химични  
свойства  
— Метод  и честота  на изготвяне  на разрежданията  
— Всички  събрани  данни  за стабилност  
— Всички  анализи  на разтворите  за дозиране  
Носител : 
— Характеризиране  на изпитвания  носител  (естество , доставчик  и 
партида ) 
— Обосновка  за избора  на носител  (когато  носителят  е различен  от 
вода ). 
Изпитвани  животни : 
— Вид и порода  и обосновка  за техния  избор  
— Доставчик  и специални  съоръжения  на доставчика  
— Възраст  при доставката , с дата на раждане  
— За незрели  животни  — дали  е доставено  с майка  или приемна  
майка , и дата на отбиване  
— Подробни  данни  за процедурата  за аклиматизация  на животното  
— Брой  животни  в клетка  
— Подробности  и метод  за индивидуална  и групова  идентификация  на 
животните  
Условия  на изследването : 
— Подробности  относно  процеса  на случаен  подбор  (т.е. използван  
метод ) 
— Обосновка  на избора  на доза; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 826
 
— Подробности  за това в какъв  вид е изпитваният  химикал  и какви  са 
достигнатите  концентрации , стабилност  и хомогенност  на този 
химикал  
— Подробности  за прилагането  на изпитвания  химикал  и обосновка  за 
избора  на път на експозиция  
— Хранителен  режим  (наименование , вид, доставчик , съдържание  и, 
ако са известни , нива  на фитоестрогени ) 
— Източник  на вода  (напр . чешмяна  вода  или филтрувана  вода ) и 
доставка  (чрез тръби  от голям  контейнер , в бутилки  и т.н.) 
— Материал  за постилане  (наименование , вид, доставчик , 
съдържание ) 
— Регистриране  на условията  за поставяне  в клетки , интервала  на 
осветление , температурата  и влажността  в помещението , 
почистването  на помещението  
— Подробно  описание  на аутопсията  и процедурите  за претегляне  на 
матката  
— Описание  на статистическите  процедури  
Резултати  
За отделните  животни : 
— Всички  дневни  индивидуални  телесни  тегла  (от разпределението  по 
групи  до аутопсията ) (с точност  до 0,1 g)  
— Възраст  на всяко  животно  (в дни, като денят  на раждане  се счита  за 
ден 0), на която  започва  прилагането  на изпитвания  химикал  
— Дата  и час на прилагане  на всяка  доза 
— Изчислен  обем  и приложена  доза и наблюдения  относно  всякакви  
загуби  по време  на прилагането  или след  него  
— Ежедневно  регистриране  на състоянието  на животното , включ­  
ително  относимите  симптоми  и наблюдения  
— Предполагаема  причина  за смъртта  (ако по време  на изследването  е 
намерено  в терминално  състояние  или мъртво ) 
— Дата  и час на умъртвяването  по хуманен  начин  с интервал  от време  
от последното  прилагане  на доза 
— Мокро  тегло  на матката  (с точност  до 0,1 mg) и всякакви  набл­  
юдения  относно  загуба  на луминална  течност  по време  на 
дисекцията  и подготовката  за претегляне  
— Тегло  на матката  в изсушено  състояние  (с точност  до 0,1 mg)  
За всяка  група  животни : 
— Средно  дневно  телесно  тегло  (с точност  до 0,1 g) и стандартни  
отклонения  (от разпределението  по групи  до аутопсията ) 
— Средни  тегла  на матката  в мокро  и изсушено  състояние  (с точност  
до 0,1 mg) и стандартни  отклонения  
— Дневна  консумация  на храна , ако е измерена  (изчислена  в грамове  
консумирана  храна  на животно ) ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 827
 
— Резултатите  от статистическите  анализи , сравняващи  теглата  на 
матката  при третираните  групи  както  в мокро , така и в изсушено  
състояние , спрямо  същите  измервания  в контролните  групи  на 
носител . 
— Резултатите  от статистическите  анализи , сравняващи  общото  
телесно  тегло  и наддаването  на тегло  при третираните  групи  
спрямо  същите  измервания  в контролните  групи  на носител . 
53. Обобщение  на важните  насочващи  факти  от метода  за изпитване  
Плъхове  Мишки  
Животни  
Порода  Обичайно  използвана  лабораторна  порода  гризачи  
Брой  животни  Най-малко  6 животни  в група  с определена  доза 
Брой  на групите  Най-малко  2 групи  за изпитване  (вж. параграф  33 за насоки ) 
и отрицателна  контролна  група  
За насоки  относно  положителните  контролни  групи  вж. 
параграфи  26 и 27 
Условия  на отглеждане  и хранене  
T° в помещението  с 
животните  22 °C ± 3 °C 
Относителна  влажност  50—60 %, но не под 30 % или над 70 % 
Ежедневна  последоват­  
елност  при осветлението  12 часа светлина , 12 часа тъмнина  
Хранителен  режим  и 
питейна  вода  Ad libitum 
Отглеждане  Индивидуално  или в група  до три животни  (за незрелите  
животни  се препоръчва  отглеждане  на групи  в общи  клетки ) 
Хранителен  режим  и 
материал  за постилане  Препоръчва  се ниско  ниво  на фитоестрогени  в хранителния  
режим  и материала  за постилане  
Протокол  
Метод  Метод  с незрели  неовариект­  
омизирани  животни  (предп­  
очитаният  метод ). 
Метод  с овариектомизирани  
полово  зрели  женски  
животни  Метод  с овариектомизирани  
полово  зрели  женски  
животни  
Възраст  при дозиране  на 
незрелите  животни  ПНД  18 най-рано . 
Дозирането  трябва  да бъде  
приключено  преди  ПНД  25 Не е относимо  в рамките  на 
обхвата  на настоящия  метод  
за изпитване . 
Възраст  при овариект­  
омията  Възраст  между  6 и 8 седмици . 
Възраст  при дозирането  
за овариектомизирани  
животни  Най-малко  14 дни следва  да 
са изтекли  от овариект­  
омията  до 1-я ден от прил­  
агането . Най-малко  7 дни следва  да са 
изтекли  от овариектомията  до 
1-я ден от прилагането . 
Телесно  тегло  Варирането  на телесното  тегло  следва  да бъде  минимално  и 
да не превишава  ± 20 % от средното  тегло . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 828
 
Плъхове  Мишки  
Дозиране  
Път на прилагане  Орален  път през сонда  или подкожно  инжектиране  
Честота  на прилагане  Еднократна  дневна  доза 
Обем  за прилагане  през 
сонда  или подкожно  
инжектиране  ≤ 5ml/kg телесно  тегло  (или до 10 ml/kg телесно  тегло  в 
случай  на водни  разтвори ) (на 2 места  на инжектиране  
при подкожно  инжектиране ) 
Продължителност  на 
прилагането  3 последователни  дни при 
модела  с незрели  животни  
Най-малко  3 последователни  
дни при модела  с овариект­  
омизирани  животни  7 последователни  дни при 
модела  с овариектомизирани  
животни  
Час на аутопсията  Около  24 часа след  последната  доза 
Резултати  
Положителен  отговор  Статистически  значимо  нарастване  на средното  тегло  на 
матката  (в мокро  и/или изсушено  състояние ) 
Референтен  естроген  17 α-етинилестрадиол  
НАСОКИ  ЗА ТЪЛКУВАНЕТО  И ПРИЕМАНЕТО  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
54. По принцип  изпитването  за естрогенност  следва  да се счита  за полож­  
ително , ако се наблюдава  статистически  значимо  увеличаване  на 
теглото  на матката  (p < 0,05) най-малко  при високото  ниво  на доза в 
сравнение  с контролната  група  на разтворител . Положителният  
резултат  се подкрепя  допълнително  от доказване  на биологически  
реалистична  връзка  между  дозата  и степента  на отговора , като се 
има предвид , че припокриването  на естрогенната  и антиестрогенната  
активност  на изпитвания  химикал  могат  да повлияят  на формата  на 
кривата  доза-отговор . 
55. Трябва  да се вземат  мерки , за да не се превишава  максималната  
допустима  доза, за да се даде  възможност  за съдържателно  тълкуване  
на данните . Намаляването  на телесното  тегло , клиничните  признаци  и 
други  находки  следва  да бъдат  подробно  оценени  в това отношение . 
56. Важно  съображение  за приемането  на данните  от утеротрофичното  
биологично  изследване  са теглата  на матката  на животните  от 
контролната  група  на носител . Високите  контролни  стойности  могат  
да поставят  под съмнение  реагирането  на биологичното  изследване  и 
способността  да открива  много  слаби  естрогенни  агонисти . Прегледът  
на специализираната  литература  и данните , получени  по време  на 
валидирането  на утеротрофичното  биологично  изследване , насочват , 
че случаи  на високи  средни  контролни  стойности  се появяват  
спонтанно , особено  при незрели  животни  (2)(3)(6)(9). Категорична  
горна  граница  за теглото  на матката  не може  да бъде  дадена , тъй 
като теглото  на матката  при незрели  плъхове  зависи  от много  проме­  
нливи , като например  породата  или телесното  тегло . Като  насока , ако 
теглото  на матката  при контролни  незрели  плъхове  е между  40 и 45 
mg, резултатите  следва  да се считат  за съмнителни , а тегло  на матката  
над 45 mg може  да доведе  до повторно  независимо  провеждане  на 
изпитването . Това  обаче  трябва  да се разглежда  за всеки  отделен  
случай  (3)(6)(8). При изпитвания  върху  възрастни  плъхове  при всяка  
непълна  овариектомия  остава  овариална  тъкан , която  може  да 
произвежда  ендогенен  естроген  и да забави  намаляването  на теглото  
на матката . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 829
 
57. Тегло  на матката  в изсушено  състояние  при контроли  на носител  от 
под 0,09 % от телесното  тегло  за незрели  женски  плъхове  и от по- 
малко  от 0,04 % за овариектомизирани  млади  полово  зрели  женски  
животни  изглежда  дава приемливи  резултати  [вж. таблица  31 (2)]. 
Ако контролните  тегла  на матката  са по-големи  от тези стойности , 
трябва  да се проучат  внимателно  различни  фактори , включително  
възрастта  на животните , правилната  овариектомия , фитоестрогените  в 
хранителния  режим  и т.н., и евентуален  отрицателен  резултат  от 
изследването  (липса  на показания  за естрогенна  активност ) трябва  да 
се използва  предпазливо . 
58. Данните  за минали  периоди  за контролните  групи  на носител  следва  да 
бъдат  запазени  в лабораторията . Данните  за минали  периоди  за отговор  
на положителни  референтни  естрогени , като 17α-етинилестрадиол , 
също  следва  да бъдат  запазени  в лабораторията . Лабораториите  могат  
също  да изпитват  отговора  на известни  слаби  естрогенни  агонисти . 
Всички  тези данни  могат  да бъдат  сравнявани  с наличните  данни  
(2)(3)(4)(5)(6)(7)(8), за да се гарантира , че методите  на лабораторията  
притежават  достатъчна  чувствителност . 
59. Теглата  на матката  в изсушено  състояние  са показали  по-малко  
вариране  от тези в мокро  състояние  в хода  изследването  на ОИСР  за 
валидиране  (6)(7). Независимо  от това, значителен  отговор  в което  и да 
е от тези две измервания  е показание , че изпитваният  химикал  има 
положителна  естрогенна  активност . 
60. Произходът  на утеротрофичния  отговор  не е изцяло  естрогенен , обаче  
положителният  резултат  при утеротрофичното  биологично  изследване  
по принцип  следва  да се тълкува  като доказателство  за естрогенен  
потенциал  in vivo  и обичайно  следва  да води  до предприемане  на 
действия  за допълнително  изясняване  (вж. параграф  9 и „Концепту­  
алната  рамка  на ОИСР  за изпитване  и оценка  на химикали , 
нарушаващи  функциите  на ендокринната  система “ (допълнение  2). 
Фигура  1 
Схематична  диаграма , показваща  хирургично  отстраняване  на 
яйчниците
  
Процедурата  започва  с отваряне  на задностраничната  коремна  стена  по 
средата  между  долния  ръб на ребрата  и хълбочния  гребен , и няколко  
милиметра  странично  от страничния  ръб на поясния  мускул . 
Яйчниците  следва  да бъдат  локализирани  в рамките  на коремната  
кухина . След  това яйчниците  се отделят  физически  от коремната  
кухина  върху  асептично  поле , поставя  се лигатура  между  яйчника  и 
матката  за овладяване  на кървенето  и яйчникът  се отстранява  чрез 
инцизия  над лигатурата  при свързването  на яйцепровода  с всеки  рог 
на матката . След  потвърждаване , че не се запазва  значително  кръвот­  
ечение , коремната  стена  трябва  да бъде  затворена  с хирургичен  шев и 
кожата  трябва  да бъде  затворена , например  с автоматични  скоби  
(autoclips) или хирургичен  шев. На животните  следва  да се даде  
възможност  да се възстановят  и теглото  на матката  да намалее  през 
период  най-малко  14 дни преди  използването . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 830
 
Фигура  2 
Отстраняване  и подготовка  на маточните  тъкани  за измерване  на 
теглото
  
Процедурата  започва  с отварянето  на коремната  стена  при лонното  
съчленение . След  това всеки  яйчник , ако е наличен , и рогът  на матката , 
се отделят  от дорзалната  коремна  стена . Пикочният  мехур  и уретерите  се 
отстраняват  от вентралната  и страничната  страна  на матката  и влагалището . 
Влакнестите  сраствания  между  ректума  и влагалището  се отделят , докато  
бъде  идентифицирана  точката  на свързване  на отвора  на влагалището  и 
кожата  на перинеума . Матката  и влагалището  се отделят  от тялото  чрез 
инцизия  на стената  на влагалището  малко  над точката  на свързване  с 
кожата  на перинеума , както  е показано  на фигурата . Матката  следва  да 
бъде  отделена  от тялото  чрез леко  срязване  на маточния  мезентерий  в 
мястото  на закрепване  по цялата  дължина  на дорзолатералния  аспект  на 
всеки  рог на матката . След  отстраняването  от тялото  излишната  мазнина  
и съединителна  тъкан  се почистват . Ако яйчниците  са налични , те се 
отстраняват  при яйцепровода , като се избягва  загубата  на луминална  
течност  от рога на матката . Ако животното  е било  овариектомизирано , 
местата  на срезовете  следва  да бъдат  изследвани  за наличие  на овариална  
тъкан . Влагалището  се отстранява  от матката  точно  под шийката  на матката , 
така че шийката  на матката  остава  с тялото  на матката , както  е показано  на 
фигурата . След  това матката  може  да бъде  претеглена . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 831
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Антиестрогенност  е способността  на даден  химикал  да потиска  актив­  
ността  на 17ß-естрадиол  в организъм  на бозайник . 
Химикал  означава  вещество  или смес . 
Дата  на раждане  е постнатален  ден 0. 
Дозиране  е общо  понятие , включващо  дозата  и честотата  и продължит­  
елността  на нейния  прием . 
Доза  е прилаганото  количество  от изпитвания  химикал . При утеротроф­  
ичното  биологично  изследване  дозата  се изразява  като маса  на изпитвания  
химикал  за единица  телесно  тегло  на изпитваното  животно  на ден (напр . mg 
на kg телесно  тегло  дневно ). 
Максимална  допустима  доза  (МДД ) е най-голямото  количество  от даден  
химикал , което , при въвеждане  в тялото , не умъртвява  изпитваните  животни  
(обозначава  се с LD  0 ) (IUPAC, 1993)  
Естрогенност  е способността  на даден  химикал  да действа  като 17ß- 
естрадиол  в организъм  на бозайник . 
Постнатален  ден X е X-тият поред  ден на живот  след  датата  на раждане . 
Чувствителност  е относителният  дял на всички  положителни /активни  
химикали , които  са класифицирани  правилно  чрез изпитването . Това  е 
мярка  за точността  на метод  за изпитване , която  предоставя  категорични  
резултати  и е важен  фактор  при оценката  на приложимостта  на метода  за 
изпитване . 
Специфичност  е относителният  дял на всички  отрицателни /неактивни  
химикали , които  са класифицирани  правилно  чрез изпитването . Това  е 
мярка  за точността  на метода  за изпитване , която  предоставя  категорични  
резултати  и е важен  фактор  при оценката  на приложимостта  на метода  за 
изпитване . 
Изпитван  химикал  е всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  
на настоящия  метод  за изпитване . 
Утеротрофичен  е термин , използван  за описване  на положителното  
влияние  върху  растежа  на тъканите  на матката . 
Валидиране  е научна  процедура , планирана  за характеризиране  на 
работните  изисквания  и ограничения  на даден  метод  за изпитване , и за 
доказване  на неговата  надеждност  и относимост  за определена  цел. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 832
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 833
 ▼M5 
Допълнение  2
 
ГУВб : Група  за управление  на валидирането  при изпитване  и оценка  на бозайници
 БЕЛЕЖКИ  КЪМ  РАМКАТА  
Бележка  1: Въвеждане  на всички  равнища  и напускане  на всички  
равнища  е възможно  и зависи  от естеството  на 
съществуващите  потребности  от информация  за целите  на 
оценката  на опасността  и риска . 
Бележка  2: На равнище  5 екотоксикологията  следва  да включва  крайни  
точки , които  дават  показания  за механизми  за вредни  
ефекти , както  и потенциални  увреждания  на равнище  
популация . 
Бележка  3: Когато  даден  мултимодален  модел  покрива  няколко  от 
отделните  изследвания  на крайни  точки , този модел  следва  
да замени  използването  на тези изследвания  на крайни  точки  
Бележка  4: Оценката  на всеки  химикал  следва  да се извършва  въз 
основа  на всеки  отделен  случай , като се взема  предвид  
цялата  достъпна  информация  и като се отчита  функцията  
на равнищата  на рамката . 
Бележка  5: Към настоящия  момент  рамката  не следва  да се счита  за 
всеобхватна . На равнища  3, 4 и 5 тя включва  изследвания , 
които  или са налични , или по отношение  на тях е в ход 
валидиране . Що се отнася  до последните , те са включени  
временно . След  като бъдат  разработени  и валидирани , те 
ще бъдат  официално  добавени  към рамката . 
Бележка  6: Равнище  5 не следва  да се разглежда  като включващо  само  
окончателни  изпитвания . Счита  се, че изпитванията , 
включени  на това равнище , допринасят  за общата  оценка  
на опасността  и риска . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 834
 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD (1998). Report of the First Meeting of the OECD Endocrine 
Disrupter Testing and Assessment (EDTA) Task Force, 10th-11th March 
1998, ENV/MC/CHEM/RA(98)5.  
(2) OECD (2003). Detailed Background Review of the Uterotrophic Bioassay: 
Summary of the Available Literature in Support of the Project of the OECD Task Force on Endocrine Disrupters Testing and 
Assessment (EDTA) to Standardise and Validate the Uterotrophic 
Bioassay. OECD Environmental Health and Safety Publication Series on Testing and Assessment № 38. ENV/JM/MONO(2003)1.
 
(3) Owens JW, Ashby J. (2002). Critical Review and Evaluation of the Uterot ­
rophic Bioassay for the Identification of Possible Estrogen Agonists and 
Antagonists: In Support of the Validation of the OECD Uterotrophic Protocols for the Laboratory Rodent. Crit. Rev. Toxicol. 32:445-520.
 
(4) OECD (2006). OECD Report of the Initial Work Towards the Validation 
of the Rodent Uterotrophic Assay — Phase 1. OECD Environmental 
Health and Safety Publication Series on Testing and Assessment № 65. 
ENV/JM/MONO(2006)33.  
(5) Kanno, J, Onyon L, Haseman J, Fenner-Crisp P, Ashby J, Owens W. 
(2001). The OECD program to validate the rat uterotrophic bioassay to 
screen compounds for in vivo estrogenic responses: Phase 1. Environ 
Health Perspect. 109:785-94.  
(6) OECD (2006). OECD Report of the Validation of the Rodent Uterotrophic 
Bioassay: Phase 2 — Testing of Potent and Weak Oestrogen Agonists by 
Multiple Laboratories. OECD Environmental Health and Safety Publi ­
cation Series on Testing and Assessment № 66. ENV/JM/MONO(2006)34.  
(7) Kanno J, Onyon L, Peddada S, Ashby J, Jacob E, Owens W. (2003). The 
OECD program to validate the rat uterotrophic bioassay: Phase Two — Dose Response Studies. Environ. Health Persp.111:1530-1549
 
(8) Kanno J, Onyon L, Peddada S, Ashby J, Jacob E, Owens W. (2003). The 
OECD program to validate the rat uterotrophic bioassay: Phase Two — Coded Single Dose Studies. Environ. Health Persp.111:1550-1558.
 
(9) Owens W, Ashby J, Odum J, Onyon L. (2003). The OECD program to 
validate the rat uterotrophic bioassay: Phase Two — Dietary phytoestrogen 
analyses. Environ. Health Persp. 111:1559-1567.  
(10) Ogasawara Y, Okamoto S, Kitamura Y, Matsumoto K. (1983). Prolife ­
rative pattern of uterine cells from birth to adulthood in intact, neonatally castrated, and/or adrenalectomized mice assayed by incorporation of 
[I
 125 ]iododeoxyuridine. Endocrinology 113:582-587.  
(11) Branham WS, Sheehan DM, Zehr DR, Ridlon E, Nelson CJ. (1985). The 
postnatal ontogeny of rat uterine glands and age-related effects of 17 β- 
estradiol. Endocrinology 117:2229-2237.  
(12) Schlumpf M, Berger L, Cotton B, Conscience-Egli M, Durrer S, 
Fleischmann I, Haller V, Maerkel K, Lichtensteiger W. (2001). Estrogen 
active UV screens. SÖFW-J. 127:10-15.  
(13) Zarrow MX, Lazo-Wasem EA, Shoger RL. (1953). Estrogenic activity in a 
commercial animal ration. Science 118:650-651.  
(14) Drane HM, Patterson DSP, Roberts BA, Saba N. (1975). The chance 
discovery of oestrogenic activity in laboratory rat cake. Fd. Cosmet. 
Toxicol. 13:425-427.  
(15) Boettger-Tong H, Murphy L, Chiappetta C, Kirkland JL, Goodwin B, 
Adlercreutz H, Stancel GM, Makela S. (1998). A case of a laboratory animal feed with high estrogenic activity and its impact on  in vivo  
responses to exogenously administered estrogens. Environ. Health 
Perspec.106:369-373.
 ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 835
 
(16) OECD (2007). Additional data supporting the Test Guideline on the 
Uterotrophic Bioassay in rodents. OECD Environmental Health and 
Safety Publication Series on Testing and Assessment № 67. 
(17) Degen GH, Janning P, Diel P, Bolt HM. (2002). Estrogenic isoflavones in 
rodent diets. Toxicol. Lett. 128:145-157.  
(18) Wade MG, Lee A, McMahon A, Cooke G, Curran I. (2003). The influence 
of dietary isoflavone on the uterotrophic response in juvenile rats. Food Chem. Toxicol. 41:1517-1525.
 
(19) Yamasaki K, Sawaki M, Noda S, Wada T, Hara T, Takatsuki M. (2002). 
Immature uterotrophic assay of estrogenic compounds in rats given 
different phytoestrogen content diets and the ovarian changes in the immature rat uterotrophic of estrogenic compounds with ICI 182,780 or antide. Arch. Toxicol. 76:613-620.
 
(20) Thigpen JE, Haseman JK, Saunders HE, Setchell KDR, Grant MF, 
Forsythe D. (2003). Dietary phytoestrogens accelerate the time of 
vaginal opening in immature CD-1 mice. Comp. Med. 53:477-485.  
(21) Ashby J, Tinwell H, Odum J, Kimber I, Brooks AN, Pate I, Boyle CC. 
(2000). Diet and the aetiology of temporal advances in human and rodent sexual development. J. Appl. Toxicol.20:343-347.
 
(22) Thigpen JE, Lockear J, Haseman J, Saunders HE, Caviness G, Grant MF, 
Forsythe DB. (2002). Dietary factors affecting uterine weights of immature 
CD-1 mice used in uterotrophic bioassays. Cancer Detect. Prev. 26:381- 
393. 
(23) Thigpen JE, Li L-A, Richter CB, Lebetkin EH, Jameson CW. (1987). The 
mouse bioassay for the detection of estrogenic activity in rodent diets: I. A standardized method for conducting the mouse bioassay. Lab. Anim. 
Sci.37:596-601.
 
(24) OECD (2008). Acute oral toxicity — up-and-down procedure. OECD 
Guideline for the testing of chemicals № 425.  
(25) OECD (2000). Ръководство  относно  признаването , оценяването  и 
използването  на клинични  признаци  като хуманен  край  за опитни  
животни , използвани  за оценка  на безопасността . Environmental 
Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 19. 
ENV/JM/MONO(2000)7.  
(26) OECD (2001). Guidance document on acute oral toxicity. Environmental 
Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 24. 
ENV/JM/MONO(2001)4.  
(27) Bulbring, E., and Burn, J.H. (1935). The estimation of oestrin and of male 
hormone in oily solution. J. Physiol. 85: 320 — 333.  
(28) Dorfman, R.I., Gallagher, T.F. and Koch, F.C (1936). The nature of the 
estrogenic substance in human male urine and bull testis. Endocrinology 
19: 33 — 41.  
(29) Reel, J.R., Lamb IV, J.C. and Neal, B.H. (1996). Survey and assessment 
of mammalian estrogen biological assays for hazard characterization. Fundam. Appl. Toxicol. 34: 288 — 305.
 
(30) Jones, R.C. and Edgren, R.A. (1973). The effects of various steroid on the 
vaginal histology in the rat. Fertil. Steril. 24: 284 — 291.  
(31) OECD (1982). Organization for Economic Co-operation and Development 
— Principles of Good Laboratory Practice, ISBN 92-64-12367-9, Paris.  
(32) Dorfman R.I. (1962). Methods in Hormone Research, Vol. II, Part IV: 
Standard Methods Adopted by Official Organization. New York, 
Academic Press.  
(33) Thigpen J. E. et al. (2004). Selecting the appropriate rodent diet for 
endocrine disruptor research and testing studies. ILAR J 45(4): 401-416.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 836
 
(34) Gray L.E. and Ostby J. (1998). Effects of pesticides and toxic substances 
on behavioral and morphological reproductive development: endocrine 
versus non-endocrine mechanism. Toxicol Ind Health. 14 (1-2): 159-184.  
(35) Booth AN, Bickoff EM and Kohler GO. (1960). Estrogen-like activity in 
vegetable oils and mill by-products. Science 131:1807-1808.  
(36) Kato H, Iwata T, Katsu Y, Watanabe H, Ohta Y, Iguchi T (2004). 
Evaluation of estrogenic activity in diets for experimental animals using in vitro assay. J. Agric Food Chem. 52, 1410-1414.
 
(37) OECD (2007). Guidance Document on the Uterotrophic Bioassay 
Procedure to Test for Antioestrogenicity. Series on Testing and 
Assessment. № 71. 
(38) Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
22 септември  2010 година  относно  защитата  на животните , 
използвани  за научни  цели  (ОВ L 276, 20.10.2010 г., стр. 33).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 837
 
Б.55. БИОЛОГИЧНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  НА HERSHBERGER ПРИ  
ПЛЪХОВЕ : КРАТКОСРОЧНО  СКРИНИНГОВО  ИЗСЛЕДВАНЕ  
ЗА (АНТИ )АНДРОГЕННИ  СВОЙСТВА  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на насоките  за 
изпитване  на ОИСР  (ТG) 441 (2009). През  1998 г. ОИСР  стартира  с 
висок  приоритет  дейност  по преразглеждане  на съществуващите  
указания  и по разработване  на нови  указания  за скрининг  и изпитвания  
за потенциални  нарушители  на функциите  на ендокринната  система  
(1). Един  от елементите  на дейността  беше  да се разработи  указание  
за биологичното  изследване  на Hershberger при плъхове . След  няколко  
десетилетия  на употреба  от фармацевтичната  промишленост , това 
изследване  е било  първоначално  стандартизирано  от официален  
комитет  от експерти  през 1962 г. като скринингов  метод  за андрогенни  
химикали  (2). През  2001—2007 г. биологичното  изследване  на 
Hershberger при плъхове  е преминало  обширна  програма  за 
валидиране , включваща  изготвянето  на контекстуален  преглед  (23), 
съставяне  на подробен  документ  с методите  (3), разработване  на ръко­  
водство  за дисекция  (21) и провеждане  на обширни  вътрешно - и межд­  
улабораторни  изследвания  за показване  на надеждността  и възпроиз­  
водимостта  на биологичното  изследване . Тези  изследвания  за 
валидирането  бяха  проведени  с мощен  референтен  андроген  (тест­  
остеронов  пропионат  (TP)), два мощни  синтетични  андрогена  
(тренболонов  ацетат  и метилтестостерон ), мощен  андрогенен  
лекарствен  продукт  (флутамид ), мощен  инхибитор  на синтеза  (фин­  
астерид ) на естествения  андроген  (дихидротестостерон , DHT), 
няколко  слаби  антиандрогенни  пестициди  (линурон , винклозолин , 
процимидон , р,р'-ДДЕ ), мощен  инхибитор  на 5α-редуктаза  (фин­  
астерид ) и два известни  отрицателни  химикала  (динитрофенол  и 
нонилфенол ) (4)(5)(6)(7)(8). Настоящият  метод  за изпитване  е 
резултат  от дългия  исторически  опит  с биологичното  изследване  и 
опита , натрупан  по време  на програмата  за изпитване  за валидиране , 
и постигнатите  резултати  по нея. 
2. Биологичното  изследване  на Hershberger е краткосрочно  скринингово  
изследване  in vivo , с използване  на спомагателни  тъкани  от мъжката  
полова  система . Изследването  е с произход  от 1930-те и е било  
изменено  през 1940-те години , за да се включат  реагиращите  на 
андрогени  мускули  от мъжката  полова  система  (2) (9—15). През  
1960-те години  над 700 възможни  андрогена  са били  подложени  на 
оценка , с използване  на стандартизирана  версия  на протокола  (2)(14), 
и използването  на изследването  както  за андрогени , така и за 
антиандрогени  е било  считано  за стандартен  метод  през 1960-те 
години  (2)(15). Настоящото  биологично  изследване  се основава  на 
промените  в теглото  на пет андрогенно  зависими  тъкани  в кастрирани  
мъжки  плъхове  в перипубертетна  възраст . С него  се извършва  оценка  
на способността  на даден  химикал  да прояви  биологична  активност , 
съответстваща  на андрогенни  агонисти , антагонисти  или инхибитори  
на 5α-редуктаза . Петте  прицелни  андрогенно  зависими  тъкани , 
включени  в този метод  за изпитване , са вентрален  дял на 
простатата  (VP), семенно  мехурче  (SV) (плюс  течности  и коагулиращи  
жлези ), анален  повдигач  и луковичнопещерист  мускул  (LABC), чифтни  
жлези  на Каупър  (COW) и главичка  на пениса  (GP). При кастрираните  
мъжки  плъхове  в перипубертетна  възраст  всички  тези пет тъкани  
реагират  на андрогени  с увеличение  в абсолютно  тегло . Когато  
същите  тези тъкани  са стимулирани  да увеличат  теглото  си чрез 
прилагане  на мощен  референтен  андроген , всичките  тези тези пет 
тъкани  реагират  на антиандрогени  с намаляване  в абсолютно  тегло . 
Изходен  модел  за биологичното  изследване  на Hershberger при 
плъхове  е бил хирургически  кастрираният  мъжки  плъх  в 
перипубертетна  възраст , който  е бил валидиран  при етапи  1, 2 и 3 
от програмата  за валидиране  на изследването  на Hershberger.  
3. Биологичното  изследване  на Hershberger служи  като механистично  
скринингово  изследване  in vivo  за андрогенни  агонисти , андрогенни  
антагонисти  и инхибитори  на 5α-редуктаза  и неговото  прилагане  
следва  да се разглежда  в контекста  на „Концептуалната  рамка  на 
ОИСР  за изпитване  и оценка  на химикали , нарушаващи  функциите  
на ендокринната  система “ (Допълнение  2). В тази концептуална  
рамка  биологичното  изследване  на Hershberger се съдържа  в равнище  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 838
 
3 като изследване  in vivo , предоставящо  данни  относно  отделен  
ендокринен  механизъм , т.е. (анти )андрогенност . То е предназначено  
да бъде  включено  в батерия  от изпитвания  in vitro  и in vivo  за уста­  
новяване  на химикали , които  имат  потенциала  да взаимодействат  с 
ендокринната  система , които  в крайна  сметка  водят  до оценки  на 
риска  за човешкото  здраве  или околната  среда . 
4. Поради  опасения , свързани  с хуманното  отношение  към животните  във 
връзка  с процедурата  по кастрация , с оглед  избягване  на етапа  на 
кастрацията , като алтернативен  модел  за биологичното  изследване  на 
Hershberger са проучвани  интактни  (некастрирани ) стимулирани  отбити  
мъжки  животни . Методът  за изпитване  със стимулирани  отбити  
животни  е валидиран  (24); в изследванията  за валидиране  обаче  
вариантът  с отбити  животни  на биологичното  изследване  на 
Hershberger не е успял , при изпитваните  дози , последователно  да 
открие  предизвикани  от слаби  антиандрогени  ефекти  върху  теглата  
на андрогенно  зависими  органи . Поради  това той не е включен  в 
настоящия  метод  за изпитване . Същевременно , като се признава , че 
неговото  използване  може  да предостави  не само  ползи  за хуманното  
отношение  към животните , но може  също  да предостави  информация  и 
за други  начини  на действие , същият  е на разположение  в Ръководство  
№ 115 на ОИСР  (25).  
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
5. Андрогенните  агонисти  и антагонисти  действат  като лиганди  за 
андрогенния  рецептор  и могат  да активират  или съответно  да 
потискат  генната  транскрипция , контролирана  от рецептора . Освен  
това някои  химикали  инхибират  превръщането  на тестостерона  в по- 
мощния  естествен  андроген  дихидротестостерон  в някои  прицелни  
андрогенно  зависими  тъкани  (инхибитори  на 5α-редуктаза ). Подобни  
химикали  имат  потенциал  да доведат  до опасност  за здравето , включ­  
ително  ефекти  върху  репродукцията  и развиващия  се организъм . 
Поради  това съществува  регулаторна  необходимост  от бързо  
извършване  на оценка  на даден  химикал  като възможен  андрогенен  
агонист  или антагонист , или инхибитор  на 5α-редуктаза . Макар  и 
даващ  информация , афинитетът  на даден  лиганд  към даден  андрогенен  
рецептор , измерен  чрез свързване  към рецептор  или транскрипционно  
активиране  на репортерни  гени  in vitro  не е единственият  определящ  
фактор  за евентуален  риск . Други  фактори  включват  метаболитно  
активиране  и деактивиране  при въвеждане  в тялото , разпределение  
на химикала  в прицелните  тъкани , и клирънс  от тялото . Това  води  
до необходимост  от скрининг  на възможната  активност  на химикал  
in vivo  при относими  условия  и експозиция . Оценката  in vivo  е по- 
малко  решаваща , ако са известни  характеристиките  на химикала  по 
отношение  на абсорбция  — разпределение  — метаболизъм  — 
екскреция  (АРМЕ ). Андрогенно  зависимите  тъкани  реагират  с бърз  и 
енергичен  растеж  на стимулиране  от андрогени , особено  при 
кастрирани  мъжки  плъхове  в перипубертетна  възраст . Различни  
видове  гризачи , особено  плъховете , се използват  също  така широко  в 
изследванията  за токсичност  за характеризиране  на риска . Поради  това, 
версията  на изследването , при която  се използват  кастрирани  плъхове  
в перипубертетна  възраст  и пет прицелни  тъкани , е подходяща  за 
скрининг  in vivo  на андрогенни  агонисти  и антагонисти , и инхибитори  
на 5α-редуктаза . 
6. Настоящият  метод  за изпитване  се основава  на тези протоколи , 
използвани  в изследването  на ОИСР  за валидиране , които  са 
показали , че са надеждни  и възпроизводими  във вътрешно - и межд­  
улабораторни  изследвания  (4)(5)(6)(7)(8). В настоящия  метод  за 
изпитване  са представени  процедури  както  за андрогени , така и за 
антиандрогени . 
7. Въпреки  че е имало  известно  вариране  в дозата  на TP за откриване  на 
антиандрогени  в програмата  на ОИСР  за валидиране  на биологичното  
изследване  на Hershberger при различните  лаборатории  (0,2 в 
сравнение  с 0,4 mg/kg/ ден, подкожно  инжектиране ), имало  е малка  
разлика  между  тези два варианта  на протоколи  по отношение  на 
способността  за откриване  на слаба  или силна  антиандрогенна  
активност . Ясно  е обаче , че дозата  на TP не трябва  да бъде  толкова  
висока , че да блокира  ефектите  на антагонистите  на рецепторите  на 
слаби  андрогени , нито  толкова  ниска , че андрогенните  тъкани  да 
реагират  със слаб  растеж  дори  без съвместно  прилагане  на 
антиандрогени . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 839
 
8. Произходът  на реакцията  на растеж  на отделните  андрогенно  зависими  
тъкани  не е изцяло  андрогенен , т.е химикали , различни  от андрогенни  
агонисти , могат  да променят  теглото  на някои  тъкани . Независимо  от 
това, реакцията  на растеж  от страна  на няколко  тъкани  едновременно  
доказва  в по-голяма  степен  андрогенно -специфичен  механизъм . 
Например  високи  дози  от мощни  естрогени  могат  да увеличат  
теглото  на семенните  мехурчета ; другите  андрогенно  зависими  
тъкани  от изследването  обаче  не реагират  по подобен  начин . 
Антиандрогенните  химикали  могат  да действат  като антагонисти  на 
андрогения  рецептор  (АР) или като инхибитори  на 5α-редуктаза . 
Инхибиторите  на 5α-редуктаза  са с променлив  ефект , тъй като 
превръщането  в по-мощния  дихидротестостерон  варира  в отделните  
тъкани . Антиандрогени , които  потискат  5α-редуктаза , като например  
финастерид , имат  по-силно  изразени  ефекти  във вентралния  дял на 
простатата , отколкото  в други  тъкани , в сравнение  с мощен  антагонист  
на АР, като например  флутамид . Тази  разлика  в тъканния  отговор  
може  да се използва , за да се направи  разграничение  между  начина  
на въздействие  чрез АР и този чрез 5α-редуктаза . Освен  това АР е 
еволюционно  свързан  с този на други  стероидни  хормони , и някои  
други  хормони , прилагани  при високи , надфизиологични  нива  на 
доза, могат  да се свържат  и да антагонизират  стимулиращите  
растежа  ефекти  на TP (13). Освен  това, също  така е реалистично  
засиленият  стероиден  метаболизъм  и последващото  намаляване  на 
серумния  тестостерон  да намалят  растежа  на андрогенно  зависими  
тъкани . Следователно , всякакви  положителни  резултати  при биолог­  
ичното  изследване  на Hershberger обикновено  следва  да бъдат  
оценявани  с помощта  на подход , основан  на тежестта  на доказат­  
елствата , включително  изследвания  in vitro , като изследванията  за 
свързване  към АР и естрогенни  рецептори  (ЕР), и съответстващите  
изследвания  за транскрипционно  активиране , или от други  изследвания  
in vivo , които  разглеждат  сходни  прицелни  андрогенно  зависими  
тъкани , като изследването  на мъжки  животни  в пубертетна  възраст , 
15-дневното  изследване  на интактни  полово  зрели  мъжки  животни  
или 28-дневното  или 90-дневното  изследвания  с повтарящи  се дози . 
9. Опитът  сочи , че ксенобиотичните  андрогени  са по-редки  от ксенобиот­  
ичните  антиандрогени . Очакването  следователно  е, че биологичното  
изследване  на Hershberger ще се използва  най-често  за скрининг  на 
антиандрогени . Процедурата  за изпитване  за андрогени  обаче  може , 
независимо  от това, да бъде  препоръчана  за стероидни  или стероидо­  
подобни  химикали , или за химикали , за които  показание  за възможни  
андрогенни  ефекти  е било  получено  чрез методите , съдържащи  се в 
равнище  1 или 2 от концептуалната  рамка  (допълнение  2). По подобен  
начин , неблагоприятни  ефекти , свързани  с (анти )андрогенни  профили , 
могат  да се наблюдават  при изследвания  на равнище  5 и да водят  до 
необходимост  от оценка  на това дали  даден  химикал  въздейства  по 
ендокринен  път. 
10. Възприето  е, че всички  процедури , свързани  с животни , следва  да 
съответстват  на местните  стандарти  за грижи  за животните ; описанията  
на грижите  и третирането , изложени  по-долу , представляват  
минимални  стандарти  за изпълнение  и се заменят  от местни  
разпоредби , като например  Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  
парламент  и на Съвета  от 22 септември  2010 г. относно  защитата  на 
животните , използвани  за научни  цели  (26). По-нататъшни  указания  за 
хуманното  отношение  към животните  се дават  от ОИСР  (17).  
11. Както  при всяко  биологично  изследване  с използване  на опитни  
животни , необходимостта  от извършване  на това изследване  трябва  
да бъде  внимателно  преценена . По същество  може  да има две 
причини  за такова  решение : 
— висок  потенциал  за експозиция  (равнище  1 от Концептуалната  
рамка ) или признаци  за (анти )андрогенност  в изследвания  in vitro  
(равнище  2), подкрепящи  проучване  дали  такива  ефекти  могат  да 
настъпят  in vivo;  
— ефекти , съответстващи  на (анти )андрогенност  в изпитвания  in vivo  
от равнище  4 или 5, подкрепящи  проучване  на конкретния  начин  
на действие , например  за да се определи  дали  ефектите  се дължат  
на (анти )андрогенен  механизъм . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 840
 
12. Определенията , използвани  за този метод  за изпитване , са дадени  в 
допълнение  1. 
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
13. Чувствитевността  при биологичното  изследване  на Hershberger се 
постига  чрез използване  на мъжки  животни  с минимално  ендогенно  
производство  на андрогени . Това  се постига  чрез използването  на 
кастрирани  мъжки  животни , при условие  че е осигурено  достатъчно  
време  след  кастрацията , за да може  основното  тегло  на прицелните  
тъкани  да достигне  минимална  еднаква  стойност . По този начин , при 
скрининг  за потенциална  андрогенна  активност  са налице  ниски  
ендогенни  нива  на циркулиращи  андрогени , хипоталамус -хипофиза - 
гонадната  ос не е в състояние  да компенсира  чрез механизми  за 
обратна  връзка , способността  на тъканите  за даване  на отговор  е макс­  
имална , а варирането  в началното  тъканно  тегло  е сведено  до 
минимум . При скрининг  за потенциална  антиандрогенна  активност , 
по-последователно  наддаване  на тъканно  тегло  може  да се постигне , 
когато  тъканите  се стимулират  чрез референтен  андроген . В резултат  
на това при биологичното  изследване  на Hershberger се изискват  само  
6 животни  за група  на определена  доза, докато  при други  изпитвания  с 
интактни  мъжки  животни , в пубертетна  възраст  или полово  зрели , се 
предлага  използване  на 15 мъжки  животни  за група  на определена  
доза. 
14. Кастрирането  на мъжките  плъхове  в перипубертетна  възраст  следва  да 
се извърши  по подходящ  начин  с използване  на одобрени  анестетици  и 
асептична  техника . През  първите  няколко  дни след  хирургичната  
интервенция  следва  да се прилагат  обезболяващи  средства , за да се 
елиминира  постхирургичният  дискомфорт . Кастрирането  подобрява  
точността  на изследването  при откриване  на слаби  андрогени  и 
антиандрогени  чрез премахване  на компенсаторните  ответни  
ендокринни  механизми , съществуващи  в интактното  животно , които  
могат  да смекчат  последиците  от прилаганите  андрогени  и 
антиандрогени , и чрез премахване  на голямото  вариране  на 
равнищата  на серумен  тестостерон  между  отделните  индивиди . 
Следователно , кастрацията  намалява  броя  на животните , изисквани  с 
цел скрининг  на тази ендокринна  активност . 
15. При скрининг  за потенциална  андрогенна  дейност , изпитваният  
химикал  се приема  всекидневно  по орален  път през сонда  или чрез 
подкожно  инжектиране  за период  от десет  последователни  дни. 
Изпитваните  химикали  се прилагат  най-малко  на две третирани  
групи  от опитни  животни , като за всяка  група  се използва  по едно  
ниво  на доза. Животните  се подлагат  на аутопсия  приблизително  24 
часа след  последната  доза. Статистически  значимо  увеличение  на 
теглото  на два или повече  прицелни  органа  в третираните  с изпитвания  
химикал  групи  спрямо  контролната  група  на носител  показва , че 
изпитваният  химикал  е положителен  по отношение  на потенциална  
андрогенна  активност  (вж. параграф  60). Андрогени , като например  
тренболон , които  не могат  да бъдат  5α-редуцирани , имат  по-силно  
изразени  ефекти  върху  LABC и GP спрямо  TP, но всички  тъкани  
следва  да показват  увеличен  растеж . 
16. При скрининг  за потенциална  андрогенна  дейност , изпитваният  
химикал  се приема  всекидневно  по орален  път през сонда  или чрез 
подкожно  инжектиране  за период  от десет  последователни  дни, съгл­  
асувано  с ежедневни  дози  TP (0,2 или 0,4 mg/kg/ ден) чрез подкожно  
инжектиране . В програмата  за валидиране  е установено , че могат  да се 
използват  или 0,2 или 0,4 mg/kg/ ден TP, тъй като и двете  са ефективни  
в откриването  на антиандрогени , и следователно  само  една  доза следва  
да бъде  избрана  за използване  при изследването . Постепенни  дози  от 
изпитвания  химикал  се прилагат  в най-малко  три третирани  групи  от 
опитни  животни , като се използва  по една  доза за група . Животните  се 
подлагат  на аутопсия  приблизително  24 часа след  последната  доза. 
Статистически  значимо  намаление  на теглото  на два или повече  
прицелни  органа  в третираните  с изпитвания  химикал  плюс  TP групи  
спрямо  контролната  група  само  на TP показва , че изпитваният  химикал  
е положителен  по отношение  на потенциална  антиандрогенна  
активност  (вж. параграф  61.).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 841
 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Избор  на вида  и породата  
17. Плъховете  и мишки  се използват  редовно  за биологичното  изследване  
на Hershberger от 1930-те години  насам . Въпреки  че от биологична  
гледна  точка  е реалистично  и плъховете , и мишките  да покажат  
сходен  отговор , въз основа  на 70-годишния  опит  с модела  с плъхове , 
плъхът  е избраният  вид за биологичното  изследване  на Hershberger. В 
допълнение , когато  данните  от дадено  биологичното  изследване  на 
Hershberger могат  да бъдат  предварителни  по отношение  на 
дългосрочно  изследване  върху  няколко  поколения , това позволява  в 
двете  изследвания  да се използват  животни  от същите  вид, порода  и 
източник . 
18. Този  протокол  позволява  на лабораториите  да избират  породата  на 
плъховете , която  да използват  при изследването , и която  по принцип  
би следвало  да бъде  традиционно  използваната  от участващата  
лаборатория . Могат  да се използват  обичайно  използваните  
лабораторни  породи  плъхове ; породи , при които  зрялата  възраст  
настъпва  значително  по-късно  от 42 дни обаче  не бива  да се използват , 
тъй като кастриране  на мъжки  животни  на възраст  42 дни би могло  да 
изключи  измерване  на теглото  на главичката  на пениса , което  може  да 
бъде  направено  единствено  след  отделянето  на препуциума  от тялото  
на пениса . По този начин  породите , получени  от плъха  Fisher 344, не 
трябва  да се използват , с изключение  на някои  редки  случаи . Плъхът  
Fisher 344 има различен  времеви  график  по отношение  на сексуалното  
развитие  в сравнение  с други  по-често  използвани  породи  като Sprague 
Dawley или Wistar (16). Ако трябва  да бъде  използвана  тази порода , 
лабораторията  би следвало  да кастрира  плъховете  от нея на малко  по- 
късна  възраст  и да е в състояние  да демонстрира  чувствителността  на 
използваната  порода . Обосновката  за избора  на породата  плъхове  
следва  да бъде  ясно  посочена  от лабораторията . Когато  скрининговото  
изследване  може  да служи  като предварително  за изследване  на 
оралната  токсичност  с повтаряща  се доза, за изследване  на токсич­  
ността  за репродукцията  и за развиващия  се организъм , или за 
дългосрочно  изследване , за предпочитане  е при всички  изследвания  
да бъдат  използвани  животни  от една  и съща  порода  и източник . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
19. Всички  процедури  трябва  да са в съответствие  с всички  местни  
стандарти  за полагане  на грижи  за лабораторни  животни . Тези  
описания  на грижите  и третирането  представляват  минимални  
стандарти  и се заменят  от по-строги  местни  разпоредби , като 
например  Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на 
Съвета  от 22 септември  2010 г. относно  защитата  на животните , 
използвани  за научни  цели  (26). Температурата  в стаята  на опитните  
животни  трябва  да бъде  22 °C (с приблизително  отклонение  ± 3 °C). 
Относителната  влажност  следва  да бъде  най-малко  30 % и е препоръч­  
ително  тя да не надвишава  70 % освен  по време  на почистване  на 
помещението . Целта  следва  да бъде  относителна  влажност  50—60 %. 
Осветлението  трябва  да бъде  изкуствено . Ежедневната  последоват­  
елност  при осветлението  трябва  да е 12 часа светлина , 12 часа 
тъмнина . 
20. Отглеждането  в група  е за предпочитане  пред  изолацията , поради  
младата  възраст  на животните  и поради  факта , че плъховете  са 
социални  животни . Чрез  отглеждането  на две или три животни  в 
клетка  се избягва  струпване  и свързания  с него  стрес , които  могат  да 
попречат  на хормоналния  контрол  на развитието  на спомагателни  
тъкани  от половата  система . Клетките  трябва  да бъдат  щателно  
почистени  за отстраняване  на възможни  замърсители  и подредени  по 
такъв  начин , че възможните  ефекти  в резултат  на местоположението  на 
клетката  да бъдат  сведени  до минимум . С клетки  с подходящ  размер  (~ 
2000 кв. см) струпването  се предотвратява . 
21. Всяко  животно  трябва  да бъде  отделно  идентифицирано  (например  с 
ушна  марка  или етикет ) с използване  на хуманен  метод . Методът  на 
идентифициране  трябва  да бъде  записан . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 842
 
22. Лабораторна  храна  и питейна  вода  трябва  да се предоставят  ad libitum . 
Лабораторията , извършваща  биологичното  изследване  на Hershberger, 
следва  да използва  лабораторния  хранителен  режим , който  тя обик­  
новено  използва  в работата  си по изпитване  на химикали . При 
проучванията  за валидиране  на биологичното  изследване  не са набл­  
юдавани  ефекти  или вариране , които  да могат  да бъдат  приписани  на 
хранителния  режим . Използваният  хранителен  режим  трябва  да бъде  
записван  и следва  да бъде  запазена  проба  от лабораторния  хранителен  
режим  за евентуален  бъдещ  анализ . 
Критерии  за параметрите  на теглото  на андрогенно  зависимите  
органи  
23. По време  на изследването  за валидиране  не са открити  доказателства  за 
това, че намаляването  на телесното  тегло  е засегнало  увеличаването  
или намаляването  на теглото  на прицелните  тъкани  (т.е., онези , които  
трябва  да бъдат  претеглени  в посоченото  изследване ). 
24. Сред  различните  породи  плъхове , използвани  успешно  в програмата  за 
валидиране , теглото  на андрогенно  зависимите  органи  при породите  с 
по-голямо  тегло  е по-голямо , отколкото  при породите  с по-малко  
тегло . Поради  това критериите  за параметрите  на теглото  при биолог­  
ичното  изследване  на Hershberger не включват  очаквани  абсолютни  
стойности  на теглото  на органите  за положителните  и отрицателните  
контроли . 
25. Тъй като коефициентът  на вариация  (CV) за дадена  тъкан  е обрат­  
нопропорционален  на статистическата  мощност , критериите  за парам­  
етрите  при биологичното  изследване  на Hershberger са основани  върху  
максималните  стойности  на CV за всяка  тъкан  (Таблица  1). Коеф­  
ициентите  на вариация  са получени  от изследванията  на ОИСР  за 
валидиране . В случай  на отрицателни  резултати , лабораториите  
следва  да проучат  коефициентите  на вариация  от контролната  група  
и третираната  с висока  доза група , за да определят  дали  свързаните  с 
максималните  стойности  на CV критерии  за параметрите  са били  
превишени . 
26. Изследването  трябва  да се повтори , когато : 1) три или повече  от 
десетте  възможни  отделни  коефициенти  на вариация  от контролната  
група  и третираната  с висока  доза група  надвишават  максимумите , 
определени  за изследвания  на агонисти  и антагонисти  в таблица  1, 
и 2) поне  две прицелни  тъкани  са били  засегнати  незначително , т.е. 
стойностите  на ρ за тях са между  0,05 и 0,10.  
Таблица  1 
Максимално  допустими  коефициенти  на вариация , определени  за 
прицелните  спомагателни  тъкани  от половата  система  за модела  с 
кастрирани  животни  в изследванията  на ОИСР  за валидиране  ( 1 ) 
Тъкан  Антиандрогенни  
ефекти  Андрогенни  ефекти  
Семенни  мехурчета  40 % 40 % 
Вентрален  дял на 
простатата  40 % 45 % 
LABC 20 % 30 % 
Жлези  на Каупър  35 % 55 % 
Главичка  на пениса  17 % 22 %  
( 1 ) Праговият  CV за дадена  тъкан  е бил идентифициран  от графика  на 
подредени  от най-малката  последователно  до най-голямата  стойности  на 
CV за всички  средни  стойности  от всички  опити , свързани  с валидирането , 
използващи  конкретен  модел  (агонист  или антагонист ). Праговият  CV е 
отчетен  от „точката  на прекъсване “ — точката , от която  увеличенията  между  
следващите  CV с най-високи  стойности  от последователността  са значително  
по-големи  от увеличенията , които  разделят  няколкото  предходни  CV. Следва  
да се отбележи , че въпреки  че в резултат  на този анализ  са определени  
относително  надеждни  „точки  на прекъсване “ за модела  на изследване  с 
антагонист , кривите  на CV за изследването  с агонист  са показали  по-едно­  
образно  увеличение , поради  което  идентификацията  на прагов  CV по този 
метод  е била  в известна  степен  произволна . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 843
 
ПРОЦЕДУРА  
Спазване  на регулаторните  изисквания  и проверка  на 
лабораторията  
27. За разлика  от утеротрофичното  биологично  изследване  (глава  Б.54 от 
настоящото  приложение ), демонстрация  на пригодността  на 
лабораторията  преди  началото  на изследването  не е необходима  за 
биологичното  изследване  на Hershberger, тъй като изпитването  на 
паралелните  положителни  (тестостеронов  пропионат  и флутамид ) и 
отрицателни  контроли  се провежда  независимо  като неразделна  част 
от изследването . 
Брой  и състояние  на животните  
28. Всяка  третирана  и контролна  група  трябва  да включва  минимум  6 
животни . Това  се отнася  както  за андрогенните , така и за 
антиандрогенните  протоколи . 
Кастриране  
29. Трябва  да има първоначален  период  за аклиматизация  от няколко  дни 
след  получаване  на животните , за да се гарантира , че животните  са в 
добро  здраве  и се развиват  добре . Тъй като при животните , кастрирани  
на възраст  по-малка  от 42 дни, или преди  постнатален  ден (ПНД ) 42, 
може  да не е настъпило  отделяне  на препуциума , животните  следва  да 
бъдат  кастрирани  на ПНД  42 или след  това, но не и преди  това. 
Животните  се кастрират  под анестезия  чрез инцизия  в скротума  и 
отстраняване  както  на тестисите , така и на епидидимите , и с 
лигиране  на кръвоносните  съдове  и отводните  канали  на семенните  
мехурчета . След  потвърждаване , че не се наблюдава  кръвотечение , 
скротумът  трябва  да бъде  затворен  с хирургичен  шев или с автом­  
атични  скоби  (autoclips). Животните  следва  да бъдат  третирани  с обез­  
боляващи  средства  през първите  няколко  дни след  хирургичната  
интервенция  за смекчаване  на всякакъв  постхирургичен  дискомфорт . 
Ако кастрираните  животни  са закупени  от доставчик  на животни , 
възрастта  на животните  и степента  на полова  зрялост  следва  да 
бъдат  гарантирани  от доставчика . 
Аклиматизация  след  кастрирането  
30. Аклиматизацията  на животните  към лабораторните  условия  следва  да 
продължи , за да се даде  възможност  за намаляването  на теглото  на 
прицелната  тъкан  за период  най-малко  от 7 дни след  кастрирането . 
Животните  трябва  да бъдат  наблюдавани  ежедневно  и всички  
животни  с признаци  на заболяване  или физически  аномалии  следва  
да бъдат  отстранени . По този начин , началото  на третирането  чрез 
започване  на дозирането  (по време  на изследването ) може  да започне  
на възраст  от ПНД  49, но не по-късно  от ПНД  60. Възрастта  при 
аутопсията  не трябва  да надвишава  ПНД  70. Тази  гъвкавост  
позволява  на лабораториите  да изготвят  ефикасен  график  на 
експерименталните  дейности . 
Телесно  тегло  и разпределение  по групи  на случаен  принцип  
31. Различията  в индивидуалните  телесни  тегла  са източник  на вариране  в 
теглото  на тъканите  както  в рамките  на дадена  група  животни , така и 
между  групите  от животни . Увеличеното  вариране  в теглото  на 
тъканите  води  до увеличен  коефициент  на вариация  (CV) и намалява  
статистическата  мощност  на изследването  (наричана  понякога  чувств­  
ителност  на изследването ). Поради  това колебанията  в телесното  тегло  
следва  да бъдат  контролирани  както  експериментално , така и статист­  
ически . 
32. Експерименталният  контрол  включва  предизвикване  на малки  
колебания  в телесното  тегло  в рамките  на отделните  изследвани  
групи  и между  тях. Първо , необичайно  малки  или големи  животни  
трябва  да се избягват  и да не се поставят  в изследваната  кохорта . 
При започване  на изследването  колебанията  в теглото  на използваните  
животни  не трябва  да превишават  ± 20 % от средното  тегло  (например  
175 g ± 35 g за кастрирани  плъхове  в перипубертетна  възраст ). Второ , 
животните  трябва  да бъдат  разпределени  към групи  (както  контролни , 
така и третирани ) чрез случайно  разпределение  по тегло , така че 
средното  телесно  тегло  във всяка  група  да не е статистически  
различно  от това в която  и да е друга  група . Процедурата  за случаен  
подбор  по блокове , която  се използва , трябва  да бъде  записана . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 844
 
33. Тъй като токсичността  може  да доведе  до намаляване  на телесното  
тегло  на третираните  групи  по отношение  на контролната  група , 
като статистически  ковариант  може  да се използва  телесното  тегло  
през първия  ден от прилагането  на изпитвания  химикал , а не телесно  
тегло  към момента  на аутопсията . 
Дозиране  
34. С цел да се установи  дали  даден  изпитван  химикал  може  да има 
андрогенно  действие  in vivo , две групи  с определена  доза от 
изпитвания  химикал  плюс  положителна  контрола  и контрола  на 
носител  (отрицателна ) (вж. параграф  43) обичайно  са достатъчни  и 
затова  тази постановка  е предпочитана  от съображения  за хуманно  
отношение  към животните . Ако целта  е да се получи  крива  доза- 
отговор  или да се екстраполира  към по-ниски  дози , необходими  са 
най-малко  3 групи  с определена  доза. Ако се изисква  информация  
извън  тази за андрогенната  активност  (като например  оценка  на ефик­  
асността ), трябва  да бъде  взета  под внимание  отделна  схема  на 
дозиране . За изпитване  за антиандрогени , изпитваният  химикал  се 
прилага  заедно  с референтен  андрогенен  агонист . Следва  да се 
използват  най-малко  3 изпитвани  групи  с различни  дози  на изпитвания  
химикал  и положителна  и отрицателна  контрола  (вж. параграф  44). С 
изключение  на третиране  с изпитвания  химикал , животните  в 
контролната  група  трябва  да бъдат  отглеждани  по идентичен  начин  
на този при животните  от изпитваната  група . Ако за прилагане  на 
изпитвания  химикал  се използва  носител , контролната  група  трябва  
да получава  най-голямото  използвано  при изпитваните  групи  
количество  носител . 
35. Всички  нива  на доза следва  да се предлагат  и подбират , като се имат  
предвид  всички  достъпни  токсикологични  и токсикокинетични  данни  
за изпитвания  химикал  или за свързани  с него  материали . Най- 
високото  ниво  на доза следва , първо , да вземе  под внимание  стой­  
ността  на LD  50 и/или информация  за остра  токсичност  с цел да се 
избегне  смърт , силно  страдание  или дистрес  при животните  
(17)(18)(19)(20) и, второ , да вземе  предвид  наличната  информация  за 
използваните  дози  в субхронични  и хронични  проучвания . Като  цяло , 
най-високата  доза следва  да не предизвиква  намаляване  в крайното  
телесно  тегло  на животните , по-голямо  от 10 % от контролното  
тегло . Най-високата  доза следва  да бъде  по-ниската  от следните : 1) 
най-високата  доза, която  гарантира  оцеляването  на животното  и 
която  е без значителна  токсичност  или дистрес  на животните  след  10 
последователни  дни на прилагане  до максимална  доза от 1 000 
mg/kg/ден (вж. параграф  36), или 2) доза, предизвикваща  
(анти )андрогенни  ефекти . Като  скрининг , големи  интервали , напр . 
половин  логаритмична  единица , отговаряща  на кратност  на дозата , 
равна  на 3,2, или дори  една  логаритмична  единица  между  дозиранията  
са общоприемливи . Ако няма  достъпни  подходящи  данни , може  да се 
проведе  изследване  за определяне  на обхвата  (вж. параграф  37), което  
да подпомогне  определянето  на използваните  дози . 
Равнище  на пределна  доза  
36. Ако изпитване  при гранична  доза от 1 000 mg/kg телесно  тегло  на ден 
и по-ниска  доза, с използване  на процедурите , описани  в това 
изследване , не успее  да предизвика  статистически  значима  промяна  в 
теглото  на репродуктивните  органи , допълнителни  нива  на доза могат  
да бъдат  счетени  за ненужни . Пределната  доза се прилага , освен  когато  
данните  за експозиция  на хора  подсказват  нуждата  от използване  на 
по-високо  ниво  на доза. 
Съображения  при определянето  на обхвата  
37. Ако е необходимо , може  да се извърши  предварително  изследване  за 
определяне  на обхвата , с малко  на брой  животни , за да се изберат  
подходящи  групи  с определена  доза [с използване  на методи  за 
изпитване  за остра  токсичност  (глави  Б.1А, Б.1Б от настоящото  прил­  
ожение  (27), ОИСР  TG 425 (19)]. Целта  в случая  на биологичното  
изследване  на Hershberger е да се изберат  дози , които  гарантират  
оцеляването  на животните , и които  са без значителна  токсичност  или ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 845
 
дистрес  за животните  след  десет  последователни  дни на прилагане  на 
химикала  до пределна  доза от 1 000 mg/kg/ ден, както  е посочено  в 
параграфи  35 и 36. В това отношение  може  да се използва  ръководство  
на ОИСР  (17) за определяне  на клиничните  признаци , които  показват  
токсичност  или дистрес  за животните . Ако е осъществимо  в рамките  на 
това изследване  за определяне  на обхвата  след  десет  дни от прил­  
агането , прицелните  тъкани  могат  да бъдат  изрязани  и претеглени  
приблизително  24 часа след  прилагане  на последната  доза. След  това 
тези данни  биха  могли  да се използват  за подпомагане  на избора  на 
дозите  в основното  изследване . 
Референтни  химикали  и носител  
38. Референтният  андрогенен  агонист  следва  да бъде  тестостеронов  
пропионат  (TP), CAS № 57-82-5. Референтната  доза TP може  да бъде  
или 0,2 mg/kg телесно  тегло  на ден или 0,4 mg/kg телесно  тегло  на ден. 
Референтният  андрогенен  антагонист  следва  да бъде  флутамид  (FT), 
CAS № 1311-84-7. Референтната  доза FT следва  да бъде  3 mg/kg 
телесно  тегло  на ден, и FT следва  да се прилага  съвместно  с 
референтната  доза TP. 
39. Препоръчва  се, винаги  когато  е възможно , първо  да се разглежда  
възможността  за прилагането  на воден  разтвор /суспензия . Но тъй 
като много  андрогенни  лиганди  или техните  метаболитни  прекурсори  
са хидрофобни , най-често  използваният  подход  е използване  на разт­  
вор/суспензия  в масло  (напр . царевично , фъстъчено , сусамово  или 
маслиново  масло ). Изпитваните  химикали  могат  да бъдат  разтворени  
в минимално  количество  95 % етанол  или други  подходящи  разт­  
ворители , и разредени  до окончателните  работни  концентрации  в 
изпитвания  носител . Токсичните  характеристики  на разтворителя  
трябва  да бъдат  известни  и следва  да се изпитат  в отделна  контролна  
група  само  на разтворител . Ако изпитваният  химикал  се счита  за 
стабилен , може  да се използва  слабо  нагряване  и енергично  
механично  действие  за подпомагане  на разтварянето  на изпитвания  
химикал . Трябва  да бъде  определена  стабилността  на изпитвания  
химикал  в носителя . Ако изпитваният  химикал  е стабилен  за периода  
на изследването , тогава  може  да бъде  приготвена  една  начална  
аликвотна  част от изпитвания  химикал , и определените  разреждания  
на дозата  да се приготвят  всеки  ден, като се внимава  да се избегне  
замърсяване  или разваляне  на пробите . 
Прилагане  на дозите  
40. TP следва  да бъде  прилаган  чрез подкожна  инжекция , а FT — по 
орален  път през сонда . 
41. Изпитваният  химикал  се прилага  по орален  път през сонда  или чрез 
подкожно  инжектиране . Съображенията  за хуманно  отношение  към 
животните  и физичните /химичните  свойства  на изпитвания  химикал  
трябва  да се вземат  под внимание  при избора  на пътя  на прилагане . 
В допълнение , токсикологичните  аспекти , като например  относимост  
към пътя  на експозиция  на химикала  при хора  (напр . относимост  на 
орален  път през сонда  към експозиция  чрез поглъщане , или на 
подкожно  инжектиране  към вдишване  или към дермална  адсорбция ) 
и съществуващата  токсикологична  информация  и данни  за мета­  
болизма  и кинетиката  (напр . необходимост  да се избегне  ефектът  на 
първото  преминаване , по-добра  ефикасност  чрез конкретен  път) следва  
да бъдат  взети  предвид , преди  да се започне  изчерпателно  дългосрочно  
изпитване , ако се получат  положителни  резултати  чрез инжектиране . 
42. Животните  трябва  да бъдат  дозирани  по същия  начин  и в същата  
времева  последователност  за срок  от десет  последователни  дни на 
приблизително  24-часови  интервали . Нивото  на дневната  доза трябва  
да се коригира  ежедневно  въз основа  на паралелните  дневни  
измервания  на телесното  тегло . Обемът  на дозата  и часът  на нейното  
прилагане  трябва  да се отчитат  за всеки  ден на експозиция . Трябва  да ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 846
 
се вземат  мерки , за да не се превишава  максималната  доза, описана  в 
параграф  35, за да се даде  възможност  за съдържателно  тълкуване  на 
данните . Намаляването  на телесното  тегло , клиничните  признаци  и 
други  находки  следва  да бъдат  подробно  оценени  в това отношение . 
За орален  път през сонда  трябва  да се използва  стомашна  тръба  или 
подходяща  интубационна  канюла . Максималният  обем  течност , който  
може  да бъде  въведен  еднократно , зависи  от телесното  тегло  на 
изпитваното  животно . Следва  да се спазват  местните  насоки  за 
грижи  за животните , но обемът  не следва  да превишава  5 ml/kg 
телесно  тегло , освен  в случай  на водни  разтвори , където  могат  да 
бъдат  използвани  10 ml/kg телесно  тегло . За подкожни  инжекции  в 
дорзално -скапуларната  и поясната  област  дозите  трябва  да се 
прилагат  посредством  стерилна  игла  (напр . 23G или 25G) и 
туберкулинова  спринцовка . Бръсненето  на мястото  на инжектиране  е 
по избор . Всякакви  загуби , изтичане  на мястото  на инжектиране  или 
непълно  дозиране  трябва  да бъдат  записвани . Общият  инжектиран  
обем  на плъх  на ден не трябва  да надхвърля  0,5 ml/kg телесно  тегло . 
Специфични  процедури  за андрогенни  агонисти  
43. За изпитването  на андрогенни  агонисти  носителят  е отрицателната  
контрола , а третираната  с TP група  е положителната  контрола . Биолог­  
ичната  активност , съответстваща  на андрогенните  агонисти , се изпитва  
с прилагане  на изпитван  химикал  на третирани  групи  в избраните  дози  
за 10 последователни  дни. Теглата  на петте  спомагателни  тъкани  от 
половата  система  в групите  на изпитван  химикал  се сравняват  с тези в 
групите  на носител  за откриване  на статистически  значими  увеличения  
на теглото . 
Специфични  процедури  за андрогенни  антагонисти  и инхибитори  
на 5α-редуктаза  
44. За изпитването  на андрогенни  антагонисти  и инхибитори  на 5α- 
редуктаза , третираната  с TP група  е отрицателната  контрола , а 
групата , на която  се прилагат  съвместно  референтни  дози  TP и FT е 
положителната  контрола . Биологичната  активност , съответстваща  на 
андрогенни  антагонисти  и инхибитори  на 5α-редуктаза , се изпитва  с 
прилагане  на референтна  доза TP и прилагане  на изпитвания  химикал  в 
продължение  на 10 последователни  дни. Теглата  на петте  спомагателни  
тъкани  от половата  система  в групите  на TP плюс  групите  на изпитван  
химикал  се сравняват  с тези в групата  само  на референтен  TP за 
откриване  на статистически  значими  намаления  на теглото . 
НАБЛЮДЕНИЯ  
Клинични  наблюдения  
45. Общи  клинични  наблюдения  следва  да бъдат  извършвани  поне  един  
път дневно  и по-често , когато  се наблюдават  признаци  на токсичност . 
Наблюденията  следва  да се извършват  за предпочитане  по едно  и също  
време  всеки  ден и като се има предвид  върховият  период  на 
предвидените  ефекти  след  получаване  на дозата . Всички  животни  
следва  да бъдат  наблюдавани  за смъртност , заболеваемост  и общи  
клинични  признаци  като промяна  в поведението , кожата , козината , 
очите , мукозните  мембрани , поява  на секреция  и екскреция , както  и 
автономна  активност  (напр . сълзене , пилоерекция , промяна  в 
големината  на зениците , необичаен  начин  на дишане ). 
46. Всяко  животно , намерено  мъртво , следва  да се отстрани  и унищожи  
без допълнителен  анализ  на данни . Всякаква  смъртност  на животни  
преди  аутопсия , следва  да бъде  записана  в изследването , заедно  с 
всички  видими  причини  за смъртността . Всяко  животно  в терминално  
състояние  трябва  да бъде  умъртвено  по хуманен  начин . Всяко  
животно , което  е в терминално  състояние  и впоследствие  е 
подложено  на евтаназия , следва  да бъде  записано  в изследването , 
заедно  с видими  причини  за терминалното  състояние . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 847
 
Телесно  тегло  и консумация  на храна  
47. Всички  животни  трябва  да бъдат  претегляни  дневно  с точност  до 0,1 g, 
като се започне  точно  преди  започване  на третирането , т.е., когато  
животните  се разпределят  на групи . Като  незадължително  измерване , 
количеството  на консумираната  храна  през периода  на третиране  може  
да бъде  измерено  за отделната  клетка  чрез претегляне  на хранилката . 
Резултатите  за консумацията  на храна  следва  да бъдат  изразени  в 
грамове  на плъх  дневно . 
Дисекция  и измерване  на теглото  на тъкани  и органи  
48. Приблизително  24 часа след  последното  прилагане  на изпитвания  
химикал , плъховете  следва  да бъдат  подложени  на евтаназия  и 
обезкръвени  съгласно  обичайните  процедури  на извършващата  
лаборатория , и да им бъде  извършена  аутопсия . Методът  на 
умъртвяване  по хуманен  начин  следва  бъде  записан  в доклада  на 
лабораторията . 
49. В идеалния  случай  аутопсията  следва  да се извърши  на случаен  
принцип  между  различните  групи , за да се избегне  поставянето  на 
дадена  група  на първо  или последно  място , което  може  да повлияе  
на данните . Всяка  констатация  по време  на аутопсията , т.е., 
патологични  изменения /видими  увреждания , следва  да се отбележи  и 
докладва . 
50. Петте  андрогенно  зависими  тъкани  (VP, SV, LABC, COW, GP) следва  
да бъдат  претеглени . Тези  тъкани  трябва  да бъдат  изрязани , вним­  
ателно  почистени  от излишна  прилепнала  тъкан  и мазнина , и трябва  
да бъде  определено  теглото  им в прясно  състояние  (нефиксирани ). С 
всяка  тъкан  следва  да се борави  с особено  внимание , за да се избегнат  
загубата  на течности  и изсушаването , които  могат  да доведат  до знач­  
ителни  грешки  и вариране  чрез намаляването  на записаните  тегла . 
Няколко  от тъканите  могат  да бъдат  много  малки  или трудни  за 
дисекция , и това води  до вариране . Следователно  е важно  лицата , 
извършващи  дисекцията  на спомагателни  тъкани  от половата  
система , да са запознати  със стандартните  процедури  за дисекция  за 
тези тъкани . Наръчник  за стандартна  работна  процедура  (СРП ) за 
дисекция  е на разположение  от ОИСР  (21). Внимателното  обучение  
в съответствие  с ръководството  за СОП  ще сведе  до минимум  даден  
потенциален  източник  на колебания  в изследването . В идеалния  случай  
същият  просектор  следва  да носи  отговорност  за дисекцията  на дадена  
тъкан , за да се елиминират  разликите  между  различните  просектори  
при обработката  на тъканта . Ако това не е възможно , аутопсията  
трябва  да се планира  така, че всеки  просектор  да извършва  дисекция  
на дадена  тъкан  от всички  третирани  групи , вместо  това един  
просектор  да извършва  дисекция  на всички  тъкани  от дадена  
контролна  група , докато  друг  отговаря  за третираните  групи . Всяка  
спомагателна  тъкан  от половата  система  трябва  да бъде  претеглена  
без изсушаване  с точност  до 0,1 mg, като теглото  се записва  за 
всяко  животно . 
51. Няколко  от тъканите  могат  да бъдат  много  малки  или трудни  за 
дисекция , и това води  до вариране . Предходниият  опит  показва  
обхват  на коефициента  на вариация , който  изглежда  се различава  на 
основата  на различната  пригодност  на лабораторията . В няколко  
случая  в рамките  на конкретна  лаборатория  са наблюдавани  големи  
разлики  в абсолютните  тегла  на тъкани  като VP и COW.  
52. Измерванията  на черен  дроб  и чифтни  органи  като бъбрек  и 
надбъбречна  жлеза  са по избор . Отново , тъканите  трябва  да бъдат  
почистени  от прилепнала  фасция  и мазнини . Черният  дроб  трябва  
бъде  претеглен  и записан  с точност  до 0,1 g, а чифтни  органи  като 
бъбрек  и надбъбречна  жлеза  — с точност  до 0,1 mg. Черният  дроб , 
бъбреците  и надбъбречните  жлези  не само  се влияят  от андрогени ; те 
също  така дават  полезни  показания  за системна  токсичност . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 848
 
53. Измерването  на серумен  лутеинизиращ  хормон  (LH), фоликулост­  
имулиращ  хормон  (FSH) и тестостерон  (T) е по избор . Серумните  
равнища  на T са полезни  за определяне  дали  изпитваният  химикал  
предизвиква  понижаващ  серумните  равнища  метаболизъм  на тест­  
остерона  в черния  дроб . Без данни  за T подобен  ефект  може  да 
изглежда  като предизвикан  по андрогенен  механизъм . Равнището  на 
LH предоставя  информация  за способността  на даден  антиандроген  
не само  да намали  теглото  на органите , но и да засегне  хипоталамус - 
хипофизната  функция , което  при продължителни  изследвания  може  да 
предизвика  тумори  на тестисите . FSH е важен  хормон  за спермат­  
огенезата . Измерванията  на серумните  Т4 и Т3 също  са по избор  и 
могат  да предоставят  полезна  допълнителна  информация  относно  
способността  за нарушаване  на хомеостазата  на тиреоидните  
хормони . Ако следва  да се извършват  измервания  на хормон , 
плъховете  трябва  да бъдат  анестезирани  преди  аутопсията  и кръвта  
да се вземе  чрез сърдечна  пункция , като методът  за анестезия  трябва  
да бъде  избран  внимателно  с оглед  да не се отрази  на измерването  на 
хормона . Методът  на изготвяне  на серума , източникът  на комплекти  за 
измерване  за радиоимунното  изследване  или на други  комплекти  за 
измерване , процедурите  за анализ , както  и резултатите  следва  да 
бъдат  записани . Равнищата  на LH следва  да бъдат  отчитани  в ng/ml 
серум , и T трябва  също  така да бъде  отчитан  в ng/ml серум . 
54. Дисекцията  на тъканите  се описва  като следва  с подробен  наръчник  за 
дисекция  със снимки , публикуван  като спомагателен  материал  като 
част от програмата  за валидиране  (21). На разположение  е също  така 
и видеоизображение  на дисекцията  на интернет  страницата  на 
Корейската  администрация  по храните  и лекарствата  (22).  
— С обърната  нагоре  вентрална  повърхност  на животното  се определя  
дали  препуциумът  на пениса  е отделен  от главичката  на пениса . 
Ако е така, тогава  препуциумът  се отдръпва  и главичката  на пениса  
се отстранява  и претегля  (с точност  до 0,1 mg), и теглото  се 
записва ; 
— Кожата  на корема  и коремната  стена  се отварят , при което  се 
разкриват  вътрешностите . Ако се претеглят  органите  по избор , 
отстранява  се и се претегля  черният  дроб  с точност  до 0,1 g, 
отстраняват  се стомахът  и червата , отстраняват  се и се претеглят  
чифтовете  бъбреци  и надбъбречни  жлези  с точност  до 0,1 mg. Тази  
дисекция  разкрива  пикочния  мехур  и започва  дисекцията  на приц­  
елните  спомагателни  тъкани  от мъжкото  животно . 
— За дисекция  на VP пикочният  мехур  се отделя  от слоя  на коремния  
мускул  чрез разрез  на съединителната  тъкан  по средната  линия . 
Пикочният  мехур  се отмества  в предна  позиция  към семенните  
мехурчета  (SV), при което  се разкриват  левият  и десният  дял от 
вентралния  дял на простатата  (обхванати  от слой  от мазнини ). 
Внимателно  се раздалечава  мазнината  от левия  и десния  дял на 
VP. Леко  се отмества  десният  дял на VP от уретрата  и се 
дисектира  дялът  от уретрата . Докато  все още се придържа  
десният  дял на VP, леко  се отмества  левият  дял на VP от 
уретрата  и след  това се дисектира ; претегля  се с точност  до 0,1 
mg и се записва  теглото . 
— За дисекция  на семенните  мехурчета  с коагулиращите  
жлези  (SVCG) пикочният  мехур  се отмества  каудално , при което  
се разкриват  семепроводът  и десният  и левият  дял на SVCG. 
Предотвратява  се изтичането  на течност  чрез прикрепване  на 
хемостат  в основата  на SVCG, където  семепроводът  се свързва  с 
уретрата . Внимателно  се извършва  дисекция  на SVCG, с прикрепен  
хемостат  се почистват  мазнините  и придатъците , поставя  се в 
тарирано  тегловно  блюдо , отстранява  се хемостатът , претегля  се с 
точност  до 0,1 mg и се записва  теглото . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 849
 
— За дисекция  на LABC се разкриват  мускулите  и основата  на пениса . 
Мускулите  на аналния  повдигач  (LA) са увити  около  колона , 
докато  предните  LA и луковичнопещерист  мускул  (BC) са 
прикрепени  към луковиците  на пениса . Кожата  и придатъците  от 
перианалната  област , простираща  се от основата  на пениса  до 
предния  край  на ануса , се отстраняват . На мускулите  на BC пост­  
епенно  се извършва  дисекция  от луковицата  и тъканите  на пениса . 
Колонът  се срязва  на две и може  да бъде  извършена  дисекция  на 
LABC и те да бъдат  напълно  отстранени . LABC се почистват  от 
мазнини  и придатъци , претеглят  се с точност  до 0,1 mg и теглото  се 
записва . 
— След  отстраняване  на аналния  повдигач  и луковичнопещеристия  
мускул  в основата  на луковиците  на пениса  и леко  дорзално  от 
тях се виждат  жлезата  на Каупър  или булбоуретралната  жлеза . 
Изисква  се внимателна  дисекция , за да се избегне  врязване  в 
тънката  капсула  с оглед  предотвратяване  на изтичането  на 
течност . Чифтните  COW се претеглят  с точност  до 0,1 mg и 
теглото  се записва . 
— В допълнение , ако по време  на аутопсия  или дисекция  е изгубена  
течност  от някоя  жлеза , това трябва  да бъде  записано . 
55. Ако оценката  на всеки  химикал  изисква  аутопсия  на повече  от 
разумното  животни  за един  ден, началото  на изследването  може  да 
се разпредели  върху  два последователни  дни, в резултат  на което  
аутопсията  и свързаната  с нея работа  също  се разпределя  върху  два 
дни. Ако е извършено  такова  разпределение , дневно  следва  да бъдат  
използвани  половината  от животните  от третирана  група . 
56. Трупове  следва  да бъдат  унищожавани  по подходящ  начин  след  
аутопсията . 
ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
57. Данните  следва  да се отчитат  индивидуално  (т.е. телесно  тегло , тегла  
на спомагателни  тъкани  от половата  система , измервания  по избор  и 
други  отговори  и наблюдения ) и за всяка  група  от животни  (средни  
стойности  и стандартни  отклонения  за всички  извършени  измервания ). 
Данните  следва  да бъдат  обобщени  в табличен  вид. Данните  трябва  да 
показват  броя  на животните  в началото  на изпитването , броя  на 
животните , намерени  мъртви  по време  на изпитването  или показващи  
признаци  на токсичност , описание  на наблюдаваните  признаци  на 
токсичност , включително  време  на настъпването  им, продължителност  
и сила . 
58. Заключителният  доклад  следва  да включва : 
Извършваща  изпитвания  лаборатория  
— Наименование  на лабораторията , местоположение  на лабораторията  
— Ръководител  на изследването  и друг  персонал  и отговорностите  им 
във връзка  с изследването  
— Дати , на които  е започнало  и приключило  изследването , т.е. първи  
ден от прилагането  на изпитвания  химикал  и съответно  последен  
ден на аутопсията . 
Изпитван  химикал  
— Източник , партида /номер  на партидата , идентичност , чистота , 
пълен  адрес  на доставчика  и характеризиране  на изпитвания (те) 
химикал (и) 
— Физична  природа  и, където  е относимо , физични  и химични  
свойства ; 
— Условия  на съхранение  и метод  и честота  на изготвяне  на 
разредени  разтвори  
— Всички  събрани  данни  за стабилност  
— Всички  анализи  на разтворите /суспензиите  за дозиране  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 850
Носител  
— Характеризиране  на носителя  (идентичност , доставчик  и номер  на 
партида ) 
— Обосновка  за избора  на носител  (когато  носителят  е различен  от 
вода ) 
Изпитвани  животни  и процедури  за отглеждане  на животните  
— Използван  вид/порода  и обосновка  за избора  
— Източник  или доставчик  на животни , включително  пълен  адрес  
— Брой  и възраст  на доставените  животни  
— Условия  на отглеждане  (температура , осветление  и др.) 
— Хранителен  режим  (наименование , вид, доставчик , номер  на 
партида , съдържание  и, ако са известни , нива  на фитоестрогени ) 
— Материал  за постилане  (наименование , вид, доставчик , 
съдържание ) 
— Условия  на поставяне  в клетки  и брой  на животните  в клетка ; 
Условия  на изследването  
— Възраст  при кастрирането  и продължителност  на аклиматизацията  
след  кастрирането ; 
— Индивидуални  тегла  на животните  в началото  на изследването  
(с точност  до 0,1 g);  
— Процедура  за разпределяне  на случаен  принцип  и запис  за 
разпределяне  по групи  на носител , референтен  химикал , изпитван  
химикал  и по клетки . 
— Средна  стойност  и стандартно  отклонение  на телесните  тегла  за 
всяка  група  за всеки  ден, в който  се извършва  претегляне  по 
време  на цялото  изследване ; 
— Обосновка  на избора  на доза; 
— Път за прилагането  на изпитвания  химикал  и обосновка  за избора  
на път на експозиция  
— При изследване  за антиандрогенност , третиране  с TP (доза и обем ), 
— Третиране  с изпитван  химикал  (доза и обем ), 
— Час на дозиране  
— Процедури  по аутопсията , включително  начини  за обезкръвяване  и 
всякаква  анестезия  
— Ако се извършват  анализи  на серум , следва  да бъдат  дадени  
подробности  за метода . Например , ако се използва  радиоимунно  
изследване  (RIA), следва  да бъдат  докладвани  процедурата  на 
RIA, източникът  на комплекти  за RIA, сроковете  на годност  на 
комплектите , процедурата  за сцинтилационно  броене , както  и 
дейности  по стандартизация . 
Резултати  
— Ежедневни  наблюдения  за всяко  животно  по време  на дозиране , 
включително : 
— Телесно  тегло  (с точност  до 0,1 g)  
— Клинични  признаци  (ако има такива ), 
— Всяко  измерване  или бележки  относно  консумацията  на храни . 
— Бележки  от аутопсията  за всяко  животно , включително : ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 851
 
— Дата  на аутопсията , 
— Третирана  група  на животното , 
— ID на животното , 
— Просектор , 
— Време  от деня , през което  са извършени  аутопсията  и дисекцията , 
— Възраст  на животното , 
— Крайно  телесно  тегло  при аутопсия , с отбелязване  на всички  
статистически  значими  увеличавания  или намалявания , 
— Ред на обезкръвяване  и дисекция  на животните  при аутопсията , 
— Тегло  на петте  прицелни  андрогенно  зависими  тъкани : 
— Вентрален  дял на простатата  (с точност  до 0,1 mg)  
— Семенни  мехурчета  плюс  коагулиращите  жлези , включително  
течността  (по двойки , с точност  до 0,1 mg)  
— комплекс  анален  повдигач  и луковичнопещерист  мускул  (с точност  
до 0,1 mg)  
— Жлези  на Каупър  (свежо  тегло  — по двойки , с точност  до 0,1 mg).  
— Главичка  на пениса  (свежо  тегло , с точност  до 0,1 mg)  
— Тегла  на тъкани , измерени  по избор , ако са измерени : 
— Черен  дроб  (с точност  до 0,1 g)  
— Бъбрек  (по двойки , с точност  до 0,1 mg)  
— Надбъбречна  жлеза  (по двойки , с точност  до 0,1 mg)  
— Общи  бележки  и коментари  
— Анализи  на серумни  хормони , ако са извършени . 
— Серумен  LH (по избор  — ng/ml серум ), и 
— Серумен  T (по избор  — ng/ml серум ) 
— Общи  бележки  и коментари  
Обобщаване  на данните  
Данните  следва  да се обобщят  в таблична  форма , съдържаща  размера  
на извадката  за всяка  група , средната  стойност  и стандартната  грешка  в 
средната  стойност  или стандартното  отклонение . Таблиците  следва  да 
включват  телесни  тегла  при аутопсия , изменения  в телесното  тегло  от 
началото  на дозирането  до аутопсията , тегла  на прицелните  спомаг­  
ателни  тъкани  от половата  система  и всякакви  други  тегла  на 
органи , измерени  по избор . 
Обсъждане  на резултатите  
Анализ  на резултатите  
59. Теглата  на тялото  и органите  при аутопсия  следва  да бъдат  статист­  
ически  анализирани  за характеристики , като например  хомогенност  на 
дисперсията , с подходящи  трансформации  на данни , ако е необходимо . 
Третираните  групи  следва  да бъдат  сравнени  с контролна  група , с 
използване  на техники  като ANOVA, следвани  от сравняване  по 
двойки  (напр . изпитването  на Dunnett с едностранна  критична  
област ) и критерият  за статистическо  различие , например , p ≤ 0,05. 
Тези  групи , за които  е постигната  статистическа  значимост , трябва  
да бъдат  идентифицирани . „Относителни  тегла  на органи “ обаче  
следва  да се избягват , поради  невалидността  на статистическите  допус­  
кания , които  са в основата  на тази обработка  на данните . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 852
 
60. За андрогенен  агонизъм  контролата  следва  да бъде  изпитваната  група  
само  на носител . Характеристиките  на начина  на действие  на даден  
изпитван  химикал  могат  да доведат  до различни  относителни  отговори  
при различните  тъкани , например  тренболон , който  не може  да бъде  
5α-редуциран , има по-силно  изразени  ефекти  върху  LABC и GP, 
отколкото  TP. Статистически  значимо  увеличение  (p ≤ 0,05) във 
всеки  две или повече  от петте  прицелни  андрогенно  зависими  тъкани  
(VP, LABC, GP, CG и SVCG) следва  да се счита  за положителен  
резултат  за андрогенен  агонист , и всички  прицелни  тъкани  следва  да 
показват  увеличен  растеж  в известна  степен . Комбинираната  оценка  на 
всички  отговори  на спомагателни  тъкани  от органи  от половата  
система  (ASO) може  да се постигне  посредством  използването  на 
подходящ  мултивариантен  анализ  на данните . Това  би могло  да 
подобри  анализа , особено  в случаите , когато  само  една  тъкан  дава 
статистически  значим  отговор . 
61. За андрогенния  антагонизъм  контролата  следва  да бъде  изпитваната  
група  на референтен  андроген  (само  тестостеронов  пропионат ). 
Характеристиките  на начина  на действие  на даден  изпитван  химикал  
могат  да доведат  до различни  относителни  отговори  сред  различните  
тъкани , например  инхибитори  на 5α-редуктаза  като финастерид , имат  
по-силно  изразени  ефекти  във вентралния  дял на простатата , отколкото  
в други  тъкани , в сравнение  с мощен  антагонист  на АР, като например  
флутамид . Статистически  значимо  намаление  (p ≤ 0,05) във всеки  две 
или повече  от петте  прицелни  андрогенно  зависими  тъкани  (VP, 
LABC, GP, CG и SVCG), свързано  единствено  с третирането  с TP, 
следва  да се счита  за положителен  резултат  за андрогенен  антагонист , 
и всички  прицелни  тъкани  следва  да показват  намален  растеж  в 
известна  степен . Комбинираната  оценка  на всички  отговори  на спом­  
агателни  тъкани  от органи  от половата  система  може  да се постигне  
посредством  използването  на подходящ  мултивариантен  анализ  на 
данните . Това  би могло  да подобри  анализа , особено  в случаите , 
когато  само  една  тъкан  дава статистически  значим  отговор . 
62. Данните  следва  да се обобщят  в таблична  форма , съдържаща  средна  
стойност , стандартна  грешка  от средната  стойност  (стандартно  
отклонение  също  би било  приемливо ) и размер  на извадката  за всяка  
група . Трябва  също  да бъдат  включени  таблици  с индивидуални  данни . 
Индивидуалните  стойности , средната  стойност , средната  грешка  
(стандартното  отклонение ) и стойността  на коефициента  на вариация  
за контролните  данни  следва  да бъдат  разгледани , за да се определи  
дали  отговарят  по допустим  начин  на критерии  за съгласуваност  с 
очаквани  стойности  от минали  периоди . При коефициенти  на 
вариация , които  надхвърлят  стойностите  на CV, изброени  в Таблица  
1 (вж. параграфи  25 и 26), за всяко  тегло  на орган  следва  да се 
определи  дали  съществуват  грешки  в записването  или въвеждането  
на данните , или дали  лабораторията  все още не е усвоила  прецизната  
дисекция  на андрогенно  зависимите  тъкани  и дали  е оправдано  
допълнително  обучение /практика . Като  цяло  CV ( стандартното  
отклонение , разделено  на средното  тегло  на органа ) са възпроизводими  
от една  лаборатория  в друга  и от едно  изследване  в друго . Предста­  
вените  данни  следва  да включват  най-малко : вентрален  дял на прост­  
атата , семенно  мехурче , анален  повдигач  и луковичнопещерист  
мускул , жлези  на Каупър , главичка  на пениса , черен  дроб , телесно  
тегло  и изменение  на телесното  тегло  от началото  на дозирането  до 
аутопсията . Данните  също  могат  да бъдат  представени  след  корекцията  
на телесното  тегло  за ковариантност , но това не следва  да замества  
представянето  на некоригираните  данни . Освен  това, ако препуциумът  
не се отделя  при някоя  от групите , случаите  на отделяне  на преп­  
уциума  следва  да бъдат  записани  и статистически  съпоставени  с 
контролната  група , с използване  на точен  тест на Фишер . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 853
 
63. При проверка  за сверяване  на точността  на въведените  компютърни  
данни  спрямо  оригиналните  данни , стойности  за теглото  на органите , 
които  не са биологично  реалистични  или варират  с повече  от три 
стандартни  отклонения  от средните  стойности  на дадената  третирана  
група , следва  да бъдат  внимателно  проучени  и може  да се наложи  да 
бъдат  пренебрегнати  поради  вероятни  грешки  при записването . 
64. Сравнението  на резултатите  от изследването  с коефициенти  на 
вариация  по данни  на ОИСР  (в Таблица  1) често  е важна  стъпка  в 
тълкуването  по отношение  на валидността  на резултатите  от 
изследването . Данните  за минали  периоди  за контролните  групи  на 
носител  следва  да бъдат  запазени  в лабораторията . Данните  за 
минали  периоди  за отговор  на положителни  референтни  химикали , 
като TP и FT, също  следва  да бъдат  запазени  в лабораторията . 
Лабораториите  могат  също  така периодично  да изпитват  отговора  на 
известни  слаби  андрогенни  агонисти  и антагонисти  и да поддържат  
тези данни . Тези  данни  могат  да бъдат  сравнявани  с наличните  
данни  на ОИСР , за да се гарантира , че методите  на лабораторията  
дават  достатъчна  статистическа  прецизност  и мощност . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 854
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Андрогенен  е термин , използван  за описване  на положителното  влияние  
върху  растежа  на андрогенно  зависими  тъкани . 
Антиандрогенен  е способността  на даден  химикал  да потиска  активността  
на TP в организъм  на бозайник . 
Химикал  означава  вещество  или смес . 
Дата  на раждане  е постнатален  ден 0. 
Доза  е прилаганото  количество  от изпитвания  химикал . При биологичното  
изследване  на Hershberger дозата  се изразява  като маса  на изпитвания  
химикал  за единица  телесно  тегло  на изпитваното  животно  на ден (напр . 
mg на kg телесно  тегло  дневно ). 
Дозиране  е общо  понятие , включващо  дозата  и честотата  и продължит­  
елността  на нейния  прием . 
В терминално  състояние  е термин , използван  за описание  на състоянието  
на животно , което  е умиращо , т.е. в близост  до момента  на смъртта . 
Постнатален  ден X е X-тият поред  ден на живот  след  датата  на раждане . 
Чувствителност  е способността  на даден  метод  за изпитване  за правилно  
идентифициране  на химикали , имащи  свойството , което  е подложено  на 
изпитване . 
Специфичност  е способността  на даден  метод  за изпитване  за правилно  
идентифициране  на химикали , нямащи  свойството , което  е подложено  на 
изпитване . 
Изпитван  химикал  е всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  
на настоящия  метод  за изпитване . 
Валидиране  е научна  процедура , планирана  за характеризиране  на 
работните  изисквания  и ограничения  на даден  метод  за изпитване , и за 
доказване  на неговата  надеждност  и относимост  за определена  цел. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 855
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 856
 ▼M5 
Допълнение  2
 
ГУВб : Група  за управление  на валидирането  при изпитване  и оценка  на бозайници
 БЕЛЕЖКИ  КЪМ  РАМКАТА  
Бележка  1: Въвеждане  на всички  равнища  и напускане  на всички  
равнища  е възможно  и зависи  от естеството  на 
съществуващите  потребности  от информация  за целите  на 
оценката  на опасността  и риска . 
Бележка  2: На равнище  5 екотоксикологията  следва  да включва  крайни  
точки , които  дават  показания  за механизми  за вредни  
ефекти , както  и потенциални  увреждания  на равнище  
популация  
Бележка  3: Когато  даден  мултимодален  модел  покрива  няколко  от 
отделните  изследвания  на крайни  точки , този модел  следва  
да замени  използването  на тези изследвания  на крайни  точки  
Бележка  4: Оценката  на всеки  химикал  следва  да се извършва  въз 
основа  на всеки  отделен  случай , като се взема  предвид  
цялата  достъпна  информация  и като се отчита  функцията  
на равнищата  на рамката . 
Бележка  5: Към настоящия  момент  рамката  не следва  да се счита  за 
всеобхватна . На равнища  3, 4 и 5 тя включва  изследвания , 
които  или са налични , или по отношение  на тях е в ход 
валидиране . Що се отнася  до последните , те са включени  
временно . След  като бъдат  разработени  и валидирани , те 
ще бъдат  официално  добавени  към рамката . 
Бележка  6: Равнище  5 не следва  да се разглежда  като включващо  само  
окончателни  изпитвания . Счита  се, че изпитванията , 
включени  на това равнище , допринасят  за общата  оценка  
на опасността  и риска . 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD (1998). Report of the First Meeting of the OECD Endocrine 
Disrupter Testing and Assessment (EDTA) Task Force, 10th-11th March 1998, ENV/MC/CHEM/RA(98)5.
 
(2) Dorfman RI (1962). Standard methods adopted by official organization. 
Academic Press, NY.  
(3) Gray LE Jr, Furr J and Ostby JS (2005). Hershberger assay to investigate 
the effects of endocrine disrupting compounds with androgenic and antian ­
drogenic activity in castrate-immature male rats. In:  Current Protocols in 
Toxicology  16.9.1-16.9.15. J Wiley and Sons Inc.  
(4) OECD (2006). Final OECD report of the initial work towards the vali ­
dation of the rat Hershberger assay. Phase 1. Androgenic response to 
testosterone propionate and anti-androgenic effects of flutamide. Environ ­
mental Health and Safety, Monograph Series on Testing and Assessment № 62. ENV/JM/MONO(2006)30.
 
(5) OECD (2008). Report of the OECD Validation of the Rat Hershberger 
Bioassay: Phase 2: Testing of Androgen Agonists, Androgen Antagonists 
and a 5α-Reductase Inhibitor in Dose Response Studies by Multiple Labo ­
ratories. Environmental Health and Safety, Monograph Series on Testing and Assessment № 86. ENV/JM/MONO(2008)3.
 
(6) OECD (2007). Report of the Validation of the Rat Hershberger Assay: 
Phase 3: Coded Testing of Androgen Agonists, Androgen Antagonists and Negative Reference Chemicals by Multiple Laboratories. Surgical Castrate Model Protocol. Environmental Health and Safety, Monograph Series on 
Testing and Assessment № 73. ENV/JM/MONO(2007)20.
 
(7) Owens, W, Zeiger E, Walker M, Ashby J, Onyon L, Gray, Jr, LE (2006). 
The OECD programme to validate the rat Hershberger bioassay to screen compounds for in vivo androgen and antiandrogen responses. Phase 1: Use 
of a potent agonist and a potent antagonist to test the standardized 
protocol. Env. Health Persp. 114:1265-1269.
 ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 857
 
(8) Owens W, Gray LE, Zeiger E, Walker M, Yamasaki K, Ashby J, Jacob E 
(2007). The OECD program to validate the rat Hershberger bioassay to 
screen compounds for in vivo androgen and antiandrogen responses: phase 2 dose-response studies. Environ Health Perspect. 115(5):671-8.
 
(9) Korenchevsky V (1932). The assay of testicular hormone preparations. 
Biochem J26:413-422.  
(10) Korenchevsky V, Dennison M, Schalit R (1932). The response of castrated 
male rats to the injection of the testicular hormone. Biochem J26:1306- 
1314.  
(11) Eisenberg E, Gordan GS (1950). The levator ani muscle of the rat as an 
index of myotrophic activity of steroidal hormones. J Pharmacol Exp Therap 99:38-44.
 
(12) Eisenberg E, Gordan GS, Elliott HW (1949). Testosterone and tissue 
respiration of the castrate male rat with a possible test for mytrophic activity. Endocrinology 45:113-119.
 
(13) Hershberger L, Shipley E, Meyer R (1953). Myotrophic activity of 19- 
nortestosterone and other steroids determined by modified levator ani 
muscle method. Proc Soc Exp Biol Med 83:175-180.  
(14) Hilgar AG, Vollmer EP (1964). Endocrine bioassay data: Androgenic and 
myogenic. Washington DC: United States Public Health Service.  
(15) Dorfman RI (1969). Androgens and anabolic agents. In: Methods in 
Hormone Research, volume IIA. (Dorfman RI, ed.) New York:Academic Press, 151-220.
 
(16) Massaro EJ (2002). Handbook of Neurotoxicology, volume I. New York: 
Humana Press, p 38.  
(17) OECD (2000). Ръководство  относно  признаването , оценяването  и 
използването  на клинични  признаци  като хуманен  край  за опитни  
животни , използвани  за оценка  на безопасността . Environmental 
Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 19. 
ENV/JM/MONO(2000)7.  
(18) OECD (1982). Organization for Economic Co-operation and Development 
— Principles of Good Laboratory Practice, ISBN 92-64-12367-9, Paris.  
(19) OECD (2008). Acute oral toxicity — up-and-down procedure. OECD 
Guideline for the testing of chemicals № 425.  
(20) OECD (2001). Guidance document on acute oral toxicity. Environmental 
Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 24. 
ENV/JM/MONO(2001)4.  
(21) Supplemental materials for Owens et al. (2006). The OECD programme to 
validate the rat Hershberger bioassay to screen compounds for in vivo 
androgen and antiandrogen responses. Phase 1: Use of a potent agonist and a potent antagonist to test the standardized protocol. Env. Health Persp. 114:1265-1269. See, section II, The dissection guidance provided 
to the laboratories: http://www.ehponline.org/docs/2006/8751/suppl.pdf.
 
(22) Korea Food and Drug Administration. Visual reference guide on 
Hershberger assay procedure, including a dissection video. http:// 
rndmoa.kfda.go.kr/endocrine/reference/education_fr.html.  
(23) OECD (2008). Background Review Document on the Rodent Hershberger 
Bioassay. Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment № 90. ENV/JM/MONO(2008)17.
 
(24) OECD (2008). Draft Validation report of the Intact, Stimulated, Weanling 
Male Rat Version of the Hershberger Bioassay.  
(25) OECD (2009). Guidance Document on the Weanling Hershberger 
Bioassay in rats: A shortterm screening assay for (anti)androgenic 
properties. Series on Testing and Assessment, Number 115.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 858
 
(26) Директива  2010/63/ ЕС на Европейския  парламент  и на Съвета  от 
22 септември  2010 година  относно  защитата  на животните , 
използвани  за научни  цели  (ОВ L 276, 20.10.2010 г., стр. 33).  
(27) Следните  глави  от настоящото  приложение : 
Б.1А. Остра  орална  токсичност  — процедура  с фиксирани  дози  
Б.1Б. Остра  орална  токсичност  — метод  клас остра  токсичност  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 859
 
Б.56 РАЗШИРЕНО  ИЗСЛЕДВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА 
РЕПРОДУКЦИЯТА  В ЕДНО  ПОКОЛЕНИЕ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на насоките  за 
изпитване  на ОИСР  (ТG) 443 (2012). Той се основава  на предложение  
на Международния  институт  за науките  за живота  (ILSI)-Институт  по 
науките  за здравето  и околната  среда  (HESI) и Техническия  комитет  по 
оценка  на безопасността  на агрохимикалите  (ACSA) за разширено  
изследване  относно  репродукцията  в едно  поколение  в жизнен  
стадий  „първо  поред  поколение “ (F  1 ), публикувано  в Cooper et al., 
2006 (1). В планирането  на изследването  са направени  някои  
подобрения  и разяснения , за да се предостави  гъвкавост  и да се 
подчертае  важността  на започването  от съществуващите  знания , като 
се използват  интравитални  наблюдения , които  да насочват  и прис­  
пособяват  изпитването . Настоящият  метод  за изпитване  обхваща  
подробно  описание  на оперативното  извършване  на разширено  
изследване  за токсичност  за репродукцията  в едно  поколение . 
Настоящият  метод  за изпитване  описва  три кохорти  животни  от 
първо  поред  поколение  (животни  от F 1 ): 
Кохорта  1: оценява  крайните  точки  за репродукцията /развиващия  се 
организъм ; тази кохорта  може  да се разшири  с оглед  да обхване  
поколение  F 2 (второ  поред  поколение ). 
Кохорта  2: оценява  потенциалното  въздействие  от експозицията  на 
химикала  върху  нервната  система  на развиващия  се организъм . 
Кохорта  3: оценява  потенциалното  въздействие  от експозицията  на 
химикала  върху  имунната  система  на развиващия  се организъм . 
2. Решенията  за това дали  да се направи  оценка  на второто  поред  
поколение  и да се пропусне  кохортата  за токсичност  за нервната  
система  на развиващия  се организъм  и/или кохортата  за токсичност  
за имунната  система  на развиващия  се организъм , следва  да 
отразяват  съществуващите  познания  за подлагания  на оценка  
химикал , както  и нуждите  на различните  регулаторни  органи . Целта  
на метода  за изпитване  е да предостави  подробности  за това как може  
да се извърши  изследването  и да засегне  въпроса  как би следвало  да 
бъде  оценявана  всяка  кохорта . 
3. Процедурата  за решение  относно  вътрешно  задействане  с оглед  произ­  
водство  на 2-ро поколение  е описана  в Ръководство  № 117 на ОИСР  
(39) за онези  регулаторни  органи , които  използват  условия  за 
вътрешно  задействане . 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ЦЕЛИ  
4. Основната  цел на разширеното  изследване  за токсичност  за репрод­  
укцията  в едно  поколение  е да оцени  специфични  жизнени  стадии , 
които  не са обхванати  от други  видове  изследвания  за токсичност , и 
извърши  изпитване  за ефекти , които  могат  да се проявят  в резултат  на 
пренатална  и постнатална  експозиция  на химикали . За крайни  точки  за 
репродукцията  се предвижда  като първа  стъпка , и когато  има в 
наличност  информация  от проучвания  с повтаряща  се доза (включ­  
ително  скринингови  изследвания  на токсичност  за репродукцията , 
напр . OECD TG 422 (32), или краткосрочни  скринингови  изследвания  
за нарушители  на функциите  на ендокринната  система  (например  
утеротрофично  изследване  — метод  за изпитване  Б.54 (36)) и 
изследване  на Hershberger — метод  за изпитване  B.55 (37), същата  
да се използва  за откриване  на ефекти  върху  репродуктивните  
органи  на мъжки  и женски  животни . Това  може  да включва  спермат­  
огенеза  (хистопатология  на тестисите ) за мъжките , и естрални  цикли , 
брой  фоликули /зреене  на овоцити  и цялостност  (хистопатология ) на 
яйчниците  за женските  животни . Впоследствие  разширеното  
изследване  за токсичност  за репродукцията  в едно  поколение  служи  
за изпитване  за крайните  точки  за репродуктивността , които  се 
нуждаят  от взаимодействие  на мъжки  с женски  животни , на женски  
животни  с плода , на женски  животни  с поколението , и поколение  F 1 
след  полова  зрялост  (виж Ръководство  № 151 на ОИСР  в подкрепа  на 
настоящия  метод  за изпитване  (40).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 860
 
5. Настоящият  метод  за изпитване  е проектиран  да предостави  оценка  на 
ефектите  на химикали  върху  пренаталното  и постнаталното  развитие , 
както  и задълбочена  оценка  на системната  токсичност  при бременни  и 
кърмещи  женски  и младо  и полово  зряло  поколение . От подробното  
проучване  на крайните  точки  за развиващия  се организъм , като 
например  жизнеспособност  на потомството , здравословно  състояние  
на новородените , статус  на развиващия  се организъм  при раждане  и 
физическо  и функционално  развитие  до достигане  на полова  зрялост , 
се очаква  да идентифицира  конкретни  прицелни  органи  при 
потомството . Освен  това проучването  ще предостави  и/или потвърди  
информация  за ефектите  на изпитвания  химикал  върху  целостта  и 
функционирането  на репродуктивната  система  при полово  зрели  
мъжки  и женски  животни . Взети  са предвид  по-специално , но не 
само , следните  параметри : функция  на гонадите , естрален  цикъл , 
зреене  на сперматозоидите  от епидидима , поведение  при чифтосване , 
зачеване , бременност , раждане  и кърмене . Освен  това информацията , 
получена  от оценките  за невротоксичност  и имунотоксичност  за 
развиващия  се организъм , ще характеризира  потенциалните  ефекти  
върху  тези системи . Данните , получени  от тези изпитвания , следва  
да позволят  определянето  на нивата  без наблюдаван  неблагоприятен  
ефект  (NOAEL), най-ниските  дози , при които  се наблюдава  неблаг­  
оприятен  ефект  (LOAEL), и/или еталонните  дози  за различните  
крайни  точки  и/или да бъдат  използвани  за охарактеризиране  на 
ефектите , открити  в предишни  проучвания  с повтаряща  се доза и/или 
да служат  като ръководство  за последващи  изпитвания . 
6. На фигура  1 е показан  схематичен  чертеж  на протокола . Изпитваният  
химикал  се прилага  непрекъснато  в постепенни  дози  на няколко  групи  
полово  зрели  мъжки  и женски  животни . Това  родителско  поколение  
(Р) се дозира  за определен  период  преди  чифтосването  (избран  въз 
основа  на наличната  информация  за изпитвания  химикал ; но в продъ­  
лжение  на най-малко  две седмици ) и в продължение  на двуседмичен  
период  на чифтосване . Мъжките  от P се третират  впоследствие  най- 
малко  до отбиването  на F 1 . Те трябва  да се третират  в продължение  на 
най-малко  10 седмици . Те могат  да бъдат  третирани  за по-дълъг  
период , ако има нужда  от изясняване  на ефектите  върху  репродук­  
цията . Третирането  на женските  животни  от Р продължава  по време  
на бременността  и кърменето  до прекратяването  след  отбиване  на 
котилата  им (т.е. третиране  за период  от 8—10 седмици ). Поколението  
F1 се третира  по-нататък  с изпитвания  химикал  от отбиването  до 
навършване  на полова  зрялост . Ако се оценява  второ  поколение  (виж 
Ръководство  № 117 на ОИСР  (39), третирането  на потомството  от F 1 се 
запазва  до отбиването  на F 2 , или до прекратяване  на изследването . 
7. При всички  животни  се провежда  клинично  наблюдение  и патологоа­  
натомично  изследване  за установяване  на признаци  на токсичност , 
като особено  внимание  се обръща  върху  състоянието  и функцията  на 
мъжката  и женската  репродуктивна  система  и върху  здравословното  
състояние , растежа  и развитието  на потомството . При отбиване , 
избрани  потомства  се разпределят  към конкретни  подгрупи  (кохорти  
1—3, вж. параграфи  33 и 34 и фигура  1) за допълнителни  проучвания , 
включително  полово  съзряване , цялост  и функциониране  на репрод­  
уктивните  органи , неврологични  и поведенчески  крайни  точки  и 
имунни  функции . 
8. При провеждане  на изследването  следва  да бъдат  спазвани  ръко­  
водните  принципи  и съображенията , формулирани  в Ръководство  
№ 19 на ОИСР  относно  признаването , оценяването  и използването  
на клинични  признаци  като хуманен  край  за опитни  животни , 
използвани  за оценка  на безопасността  (34).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 861
 
9. Когато  са на разположение  достатъчен  брой  изследвания , за да се 
установи  въздействието  на този нов план  за изследване , методът  за 
изпитване  ще бъде  прегледан  и, ако е необходимо , преразгледан  в 
светлината  на придобития  опит . 
Фигура  1 
Схема  на разширеното  изследване  за токсичност  за репродукцията  в едно  
поколение
  
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА /ПОДГОТОВКАТА  ЗА ИЗПИТВАНЕТО  
Животни  
Избор  на вида  и породата  на животните  
10. Изборът  на видовете  за изпитването  за токсичност  за репродукцията  
трябва  да бъде  внимателно  обмислено  в съответствие  с цялата  налична  
информация . Поради  количеството  съпътстващи  данни  и съпоста­  
вимостта  с изпитванията  за обща  токсичност  обаче  плъховете  
обичайно  са предпочитаният  вид, и критериите  и препоръките , 
дадени  при настоящия  метод  за изпитване , се отнасят  за този вид. 
Използването  на друг  животински  вид трябва  да се обоснове  и в 
тези случаи  се налага  да се внесат  съответни  модификации  в прот­  
окола . Не трябва  да се използват  породи  с ниска  плодовитост  или 
породи , за които  е характерна  висока  честота  на спонтанните  
вродени  аномалии . 
Възраст , телесно  тегло  и критерии  за включване  
11. Като  родители  трябва  да се използват  здрави  животни , които  в 
миналото  не са били  подлагани  на опитни  процедури . Следва  да 
бъдат  изследвани  мъжки  и женски  животни , като женските  индивиди  
следва  да не са раждали  и да не са бременни . Животните  от поколение  
Р трябва  да бъдат  в полова  зрялост , със сходно  тегло  в началото  на 
дозирането  (в рамките  на съответния  пол), на подобна  възраст  (около  
90 дни) при чифтосването , и представителни  за изследваните  вид и 
порода . Животните  следва  да бъдат  аклиматизирани  в продължение  
на поне  5 дни след  пристигането  им. Животните  се разпределят  на 
случаен  принцип  към контролните  и третираните  групи , по начин , 
който  води  до съпоставими  между  групите  стойности  на средното  
телесно  тегло  (т.е. ± 20 % от средната  стойност ). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 862
 
Условия  на отглеждане  и хранене  
12. Температурата  в стаята  на опитните  животни  трябва  да бъде  22 °C 
(± 3 °C). Относителната  влажност  следва  да бъде  между  30 и 70 %, с 
идеален  обхват  от 50—60 %. Изкуственото  осветление  следва  да бъде  
настроено  на 12 часа светлина , 12 часа тъмнина . Уместно  е да се 
използват  конвенционални  лабораторни  храни  при неограничено  
количество  вода  за пиене . Особено  внимание  следва  да се обърне  на 
съдържанието  на фитоестрогени  в хранителния  режим , тъй като 
високото  равнище  на фитоестрогени  в хранителния  режим  може  да 
засегне  някои  крайни  точки  на репродукцията . Препоръчват  се 
стандартизирани  хранителни  режими  със свободна  рецептура , в 
които  естрогенните  химикали  са намалени  (2)(30). Изборът  на 
хранителен  режим  може  да бъде  повлиян  от нуждата  да се осигури  
подходящо  смесване  с изпитван  химикал , когато  прилагането  му е по 
настоящия  метод . Трябва  да бъдат  проверени  съдържанието , хомоген­  
ността  и стабилността  на изпитвания  химикал  в хранителния  режим . 
Храната  и водата  за пиене  следва  да бъдат  редовно  анализирани  за 
наличието  на замърсители . Проби  от всяка  партида  хранителен  
режим , използван  по време  на изпитването , следва  да се съхранят  
при подходящи  условия  (напр . замразени  при температура  — 20 °C), 
до приключването  на доклада , в случай  че резултатите  се нуждаят  от 
допълнителен  анализ  на съставките  на хранителния  режим . 
13. Животните  се настаняват  в клетки  в малки  групи  от един  и същ пол и 
третирана  група . Те могат  да бъдат  отглеждани  в индивидуални  
клетки , за да се избегнат  евентуалните  наранявания  (напр . мъжки  
след  периода  на чифтосването ). Чифтосването  трябва  да се извършва  
в клетки , подходящи  за тази цел. След  като се открият  доказателства  за 
копулация  женските , за които  се предполага , че са бременни , се 
настаняват  отделно  в клетки  за раждане  или майчинство , където  им 
се предоставят  подходящи  гнездови  материали . Котилата  се отглеждат  
с майките  им до отбиването . Животните  от F 1 се отглеждат  в малки  
групи  от един  и същ пол и третирана  група  от отбиването  до 
прекратяването  на изследването . Ако това е научно  обосновано , 
животните  могат  да бъдат  отглеждани  отделно . Нивото  на фито­  
естрогени , съдържащи  се в избраните  материали  за постилане , следва  
да бъде  минимално . 
Брой  и идентифициране  на животните  
14. Обикновено  всяка  изпитвана  и контролна  група  трябва  да се състои  от 
достатъчен  брой  чифтосващи  се двойки  за достигане  на най-малко  20 
бременни  женски  животни  за подложена  на дадена  доза група . Целта  е 
да се получат  достатъчно  на брой  бременности , за да се осигури  
съдържателна  оценка  на потенциала  на химикала  да влияе  върху  
плодовитостта , бременността  и майчиното  поведение  при животните  
от поколение  Р, както  и върху  растежа  и развитието  на потомството  
от F 1 от зачеването  до зрелостта . Недостигането  на желания  брой  
бременни  животни  не означава  непременно , че изследването  е 
невалидно , и следва  да се оценява  за всеки  отделен  случай , като се 
има предвид  евентуална  причинно -следствена  връзка  с изпитвания  
химикал . 
15. На всяко  животно  от P се дава уникален  идентификационен  номер , 
преди  да започне  дозирането . Ако лабораторните  данни  от минали  
периоди  сочат , че е възможно  значителен  дял женски  индивиди  да 
не покажат  редовни  естрални  цикли  (4 или 5 дни), тогава  преди  
началото  на третирането  се препоръчва  оценка  на естралните  цикли . 
Като  алтернатива , размерът  на групата  може  да бъде  увеличен , за да се 
гарантира , че поне  20 женски  животни  във всяка  група  ще имат  
редовни  естрални  цикли  (4 или 5 дни) в началото  на третирането . 
Цялото  потомство  от F 1 се идентифицира  индивидуално  при първия  
преглед  на новородените  през постнатален  ден (ПНД ) 0 или 1. В 
документацията  трябва  да се обозначи  от кое котило  произлиза  всяко  
животно  от F 1 и, където  е приложимо , от F 2 , по време  на цялото  
изследване . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 863
 
Изпитван  химикал  
Налична  информация  за изпитвания  химикал  
16. Прегледът  на съществуващата  информация  е важен  за решенията  
относно  пътя  на въвеждане , избора  на носител , избора  на животински  
вид, избора  на дозирането  и евентуалните  изменения  в графика  за 
дозиране . Следователно  цялата  налична  относима  информация  за 
изпитвания  химикал , т.е. физични , химични , токсикокинетични  
(включително  специфичен  за вида  метаболизъм ), токсикодинамични  
свойства , зависимости  структура -активност  (SAR), метаболитни  
процеси  in vitro , резултати  от предходни  изследвания  за токсичност  
и относима  информация  за структурни  аналози  следва  да бъде  взета  
предвид  при планирането  на разширеното  изследване  за токсичност  за 
репродукцията  в едно  поколение . Предварителна  информация  за 
абсорбцията , разпределението , метаболизма , екскрецията  (АРМЕ ) и 
биоакумулацията  може  да се получи  от химичната  структура , 
физичните  и химичните  данни , обхвата  на изследванията  на 
свързването  с плазмени  протеини  или токсикокинетиката  (TK), а 
резултати  от изследванията  за токсичност  дават  допълнителна  
информация , например  относно  NOAEL, метаболизма  или метабол­  
итната  индукция . 
Вземане  предвид  на токсикокинетични  данни  
17. Въпреки  че не се изискват , данните  за TK от извършени  в миналото  
изследвания  за определяне  на обхвата  или други  изследвания  са 
изключително  полезни  при изготвянето  на плана  на изследването , 
избирането  на нивата  на доза и тълкуването  на резултатите . От 
особена  полза  са данни , които : 1) служат  за проверка  на експозицията  
на изпитвания  химикал  (или относимите  метаболити ) на развиващите  
се зародиши  и на новородените , 2) предоставят  приблизителна  оценка  
на вътрешната  дозиметрия , и 3) служат  за оценка  на потенциално  
насищане  на кинетичните  процеси  в зависимост  от дозата . Допълн­  
ителни  данни  за ТК, като например  метаболитни  профили , изменение  
на концентрацията  във времето  и т.н. също  трябва  да бъдат  взети  под 
внимание , ако са налични . Допълнителни  данни  за TK могат  също  да 
се съберат  по време  на основното  изследване , при условие  че това не 
пречи  на събирането  и тълкуването  на крайните  точки  на основното  
изследване . 
Като  обща  насока , следният  набор  от данни  за TK биха  били  от полза  
за планиране  на разширеното  изследване  за токсичност  за репрод­  
укцията  в едно  поколение : 
— Късна  бременност  (например , ден 20 от бременността ) — кръв  от 
майката  и от плода  
— Среда  на периода  на кърмене  (ПНД  10) — кръв  от майката  и от 
новороденото  и/или мляко  
— Ранен  период  след  отбиването  (напр . ПНД  28) — кръвни  проби  от 
отбитото  животно  
Следва  да се прилага  гъвкавост  при определяне  на конкретните  
определяеми  компоненти  (напр . изходният  химикал  и/или метабол­  
итите ) и схема  за вземане  на проби . Например , броят  на взетите  
проби  и графикът  за пробовземане  в даден  ден ще зависят  от пътя  
на експозиция  и предварителното  познаване  на токсикокинетичните  
свойства  при животни , които  не са бременни . За изследвания  на 
хранителни  режими  пробовземането  последователно  по едно  и също  
време  през всеки  от тези дни е достатъчно , докато  при дозирането  през 
сонда  може  да доведе  до необходимост  от допълнителни  времена  на 
пробовземане , за да се получи  по-добра  приблизителна  оценка  на 
обхвата  от вътрешни  дози . Не е необходимо  обаче  да се покрива  
цялото  изменение  на концентрацията  във времето  в един  отделен  ден 
за пробовземане . Ако е необходимо , кръвта  може  да се обедини  по пол 
в рамките  на дадено  котило  за анализите  на плода  и новородените . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 864
 
Път  на прилагане  
18. Изборът  на път следва  да отчита  пътя  или пътищата , които  са 
относими  в най-голяма  степен  към експозицията  на човека . Въпреки  
че протоколът  е проектиран  за прилагане  на изпитвания  химикал  чрез 
хранителен  режим , той може  да се модифицира  за прилагане  по други  
пътища  (питейна  вода , сонда , вдишване , през кожата ), в зависимост  от 
характеристиките  на химикала  и изискваната  информация . 
Избор  на носител  
19. Когато  е необходимо , изпитваният  химикал  е в разтвор  или в 
суспензия  в подходящ  носител . Препоръчва  се, когато  е възможно , 
най-напред  да се прецени  дали  може  се използва  воден  разтвор /сус­  
пензия , след  това да се прецени  за разтвор /емулсия  в масло  (напр . 
царевично  олио ). Когато  се използват  други  носители  освен  водата , 
трябва  да се познават  токсикологичните  свойства  на носителя . 
Използването  на носители  с потенциална  действителна  токсичност  
трябва  да се избягва  (напр . ацетон , диметилсулфоксид ). Трябва  да 
бъде  определена  стабилността  на изпитвания  химикал  в носителя . 
Когато  за улесняване  на дозирането  се използва  носител  или друга  
добавка , следва  да се вземат  предвид  следните  характеристики : 
ефекти  върху  абсорбцията , разпределението , метаболизма  или 
задържането  на изпитвания  химикал ; ефекти  върху  химичните  
свойства  на изпитвания  химикал , които  могат  да изменят  токсиколог­  
ичните  му характеристики ; и ефекти  върху  консумирането  на храна  
или вода , или хранителния  статус  на животните . 
Избор  на доза  
20. Обикновено  изследването  трябва  да включва  поне  три нива  на доза и 
една  паралелна  контрола . При избора  на подходящи  нива  на доза, 
изследователят  трябва  да вземе  под внимание  цялата  налична  
информация , включително  информация  за дозиране  от предходни  
изследвания , данни  от TK от бременни  животни  и от животни , които  
не са бременни , степен  на прехвърляне  чрез млякото , и приблизителна  
оценка  на експозицията  на човека . Ако има налични  данни  от ТК, 
които  показват  насищане  на кинетичните  процеси  в зависимост  от 
дозата , следва  да се положат  грижи  да се избегнат  високи  нива  на 
доза, които  ясно  демонстрират  насищане , при условие , разбира  се, че 
се очаква  експозицията  на човека  да е доста  под точката  на насищане . 
В такива  случаи  най-високото  ниво  на доза трябва  да бъде  на инфл­  
ексната  точка  за преминаване  към нелинейно  TK поведение , или 
съвсем  малко  над нея. 
21. В отсъствието  на относими  данни  от TK, нивата  на доза следва  да се 
основават  на токсичните  ефекти , освен  ако няма  ограничение , свързано  
с физическите  и химическите  свойства  на изпитвания  химикал . Ако 
нивата  на доза се основават  на токсичност , най-високата  доза следва  
да бъде  подбрана  така, че да предизвика  някаква  системна  токсичност , 
но не смърт  или тежко  страдание  на животните . 
22. Следва  да се подберат  нива  на доза в намаляваща  последователност  с 
цел установяване  на всеки  един  ефект , свързан  с дозата , както  и да се 
установят  NOAEL или дозите  в близост  до границата  на откриване , с 
което  ще се даде  възможност  за определяне  на еталонна  доза за най- 
чувствителната  крайна  точка  или точки . Често  двукратните  или 
четирикратните  интервали  са оптимални  с оглед  избягване  на големи  
интервали  на дозите  между  NOAEL и LOAEL. Добавянето  на четвърта  
изпитвана  група  често  е за предпочитане  пред  използването  на много  
голям  интервал  (напр . повече  от 10-кратен ) между  дозите . 
23. С изключение  на третиране  с изпитвания  химикал , животните  в 
контролната  група  се отглеждат  по начин , идентичен  на този при 
животните  от изпитвана  група . Животните  от тази група  следва  да 
не се третират , или да им се провежда  фиктивно  третиране , или това 
да е контролна  група  на носител , когато  се използва  такъв  при прил­  
агането  на изпитвания  химикал . Когато  се използва  носител , той 
следва  да се въвежда  на животните  от контролната  група  в най- 
голямото  използвано  количество . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 865
 
Изпитване  при пределна  концентрация  
24. Ако при изследвания  с повтаряща  се доза няма  показания  за токс­  
ичност  при доза от поне  1 000 mg/kg телесно  тегло /ден, или ако не 
се очаква  токсичност , изхождайки  от данните  за структурно  и/или 
метаболитно  свързани  химикали , показващи  сходство  в метаболитните  
свойства  in vivo/in vitro , може  да не е необходимо  изследване , 
използващо  няколко  нива  на доза. В такива  случаи  разширеното  
изпитване  за токсичност  за репродукцията  в едно  поколение  може  да 
се извърши  с използване  на контролна  група  и еднократна  доза от поне  
1 000 mg/kg телесно  тегло /ден. Ако обаче  при тази пределна  доза бъдат  
намерени  доказателства  за токсичност  за репродукцията  или за 
развиващия  се организъм , за идентифицирането  на NOAEL ще са необ­  
ходими  допълнителни  изследвания  при по-ниски  нива  на доза. Тези  
съображения  за изпитване  при пределна  концентрация  се прилагат  
само  когато  експозиция  на човека  не показва  необходимостта  от по- 
високо  ниво  на доза. 
ПРОЦЕДУРИ  
Експозиция  на потомството  
25. Експозицията  чрез хранителния  режим  е предпочитаният  метод  за 
прилагане . При изследване  чрез сонда  следва  да се отбележи , че 
новородените  обикновено  са експонирани  на изпитвания  химикал  
само  индиректно  чрез майчиното  мляко  до отбиването  им, когато  за 
тях започва  директното  дозиране . При изследване  чрез хранителния  
режим  или питейната  вода  новородените  получават  допълнително  
изпитвания  химикал  и директно , когато  започнат  да се хранят  самосто­  
ятелно  през последната  седмица  от периода  на кърмене . Следва  да 
бъдат  разгледани  изменения  на плана  на изследването , ако екскрецията  
на изпитвания  химикал  чрез млякото  е слаба  и когато  липсват  дока­  
зателства  за непрекъсната  експозиция  на потомството . В тези случаи  
следва  да се разгледа  директно  дозиране  през периода  на кърмене  въз 
основа  на наличната  информация  за ТК, токсичността  за потомството  
или измененията  в биомаркерите  (3)(4). Преди  провеждането  на 
изследвания  за директно  дозиране  на новородени  в периода  на 
кърмене  следва  внимателно  да се разгледат  предимствата  и недост­  
атъците  (5). 
График  на дозирането  и прилагане  на дозите  
26. Известна  информация  за естралния  цикъл , хистопатологията  на 
мъжката  и женската  репродуктивна  система  и анализа  на състоянието  
на сперматозоидите  от тестисите /епидидима  може  да е налична  от 
предходни  изследвания  за токсичност  с повтаряща  се доза с 
подходяща  продължителност . Следователно  продължителността  на 
третирането  през времето  преди  чифтосването  в разширеното  
изпитване  за токсичност  за репродукцията  в едно  поколение  е 
насочена  към откриване  на ефектите  върху  функционалните  промени , 
които  могат  да попречат  на поведението  при чифтосване  и на 
оплождането . Третирането  през времето  преди  чифтосването  следва  
да бъде  достатъчно  дълго , за да се постигнат  условия  на стационарно  
състояние  при експозиция  на мъжките  и женските  животни  от P. В 
повечето  случаи  2-седмично  третиране  през времето  преди  чифт­  
осването  и за двата  пола  се счита  за подходящо . За женските  това 
обхваща  3-4 пълни  естрални  цикъла  и следва  да е достатъчно  за 
откриване  на всякакви  неблагоприятни  ефекти  върху  цикличността . 
За мъжките  това се равнява  на времето , необходимо  за преминаването  
на узряващите  сперматозоиди  през епидидима  и следва  да позволява  
откриване  на пост -тестикуларни  ефекти  върху  сперматозоидите  (през 
последните  етапи  от напускането  на клетките  на Сертоли  и узряването  
на сперматозоидите  в епидидима ) при чифтосване . Към момента  на 
прекратяване , когато  по график  са планирани  хистологията  на 
тестисите  и епидидима  и анализът  на параметрите  за оценка  на 
състоянието  на сперматозоидите , мъжките  от P и F 1 вече ще са били  
експонирани  в продължение  най-малко  на един  процес  на спермат­  
огенеза  ((6)(7)(8)(9) и Ръководство  № 151 на ОИСР  (40)).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 866
 
27. Сценариите  на експозиция  през времето  преди  чифтосването  за 
мъжките  животни  могат  да бъдат  адаптирани , ако в предходни  
изследвания  са били  ясно  показани  тестикуларна  токсичност  
(нарушаване  на сперматогенезата ) или ефекти  върху  целостта  и функц­  
ионирането  на сперматозоидите . По подобен  начин , за женските  
животни , известни  въздействия  на изпитвания  химикал  върху  
естралния  цикъл  и следователно  върху  способността  за чифтосване , 
могат  да оправдаят  различни  сценарии  на експозиция  през времето  
преди  чифтосването . В специални  случаи  може  да се допусне  
третиране  на женски  животни  от Р да започне  само  след  получаване  
на положителна  натривка  за сперматозоиди  (вж. Ръководство  № 151 на 
ОИСР  (40)).  
28. След  като е установен  периодът  на дозиране  през времето  преди  чифт­  
осването , животните  следва  да бъдат  третирани  с изпитвания  химикал  
непрекъснато  7 дни в седмицата  до аутопсията . Дозирането  на всички  
животни  трябва  да се извършва  по един  и същ метод . Дозирането  
следва  да продължи  по време  на 2-седмичния  период  на чифтосване , 
а за женски  животни  от P — по време  на бременността  и кърменето  до 
деня  на прекратяване  след  отбиването . Мъжките  животни  трябва  да 
бъдат  третирани  по същия  начин  до прекратяването  в момента , в 
който  животните  от F 1 бъдат  отбити . За аутопсия  следва  да се дава 
приоритет  на женски  животни , които  следва  да бъдат  подложени  на 
аутопсия  на същия /подобен  ден от периода  на кърмене . Аутопсията  на 
мъжки  може  да се разпростре  върху  по-голям  брой  дни в зависимост  
от лабораторните  съоръжения . Освен  ако вече е започнато  през 
периода  на кърмене , директното  дозиране  на избраните  мъжки  и 
женски  животни  от F 1 следва  да започне  при отбиването  и да 
продължи  до деня  на аутопсията  по график , в зависимост  от 
разпределението  на кохортата . 
29. За химикали , които  се прилагат  чрез хранителен  режим  или вода  за 
пиене , е важно  да се гарантира , че количеството  изпитван  химикал  не 
пречи  на нормалното  хранене  и водния  баланс . Когато  изпитваният  
химикал  се прилага  чрез хранителен  режим , могат  да бъдат  използвани  
постоянна  хранителна  концентрация  (ррm) или постоянно  ниво  на доза 
спрямо  телесното  тегло  на животното ; използваната  алтернатива  
трябва  да бъде  посочена . 
30. Когато  изпитваният  химикал  се прилага  чрез сонда , обемът  на 
течността , приложен  наведнъж , обикновено  не следва  да превишава  
1 ml/100 g телесно  тегло  (0,4 ml/100 g телесно  тегло  е максималната  
стойност  за масло , напр . царевично  масло ). Варирането  в обема  трябва  
да бъде  сведено  до минимум , като концентрацията  се приспособи  с 
оглед  гарантиране  на постоянен  обем  при всички  нива  на доза, с 
изключение  на химикали  с дразнещо  или корозивно  действие , тъй 
ефектът  им обичайно  се засилва  при по-високи  концентрации . 
Третирането  следва  да се прилага  по едно  и също  време  всеки  ден. 
Дозата  за всяко  животно  следва  обикновено  да се основава  на най- 
актуалното  измерване  на индивидуалното  телесно  тегло  и да се 
коригира  най-малко  веднъж  в седмицата  при полово  зрели  мъжки  и 
полово  зрели  женски , които  не са бременни , и на всеки  два дни при 
бременните  женски  и животните  от F 1 , когато  се прилага  преди  
отбиването  и в продължение  на 2-те седмици  след  отбиването . Ако 
данни  от ТК сочат  слабо  преминаване  на изпитвания  химикал  през 
плацентата , може  да се наложи  дозата  през сонда  през последната  
седмица  на бременността  да бъде  коригирана , за да се предотврати  
прилагането  на прекалено  токсична  доза за майката . В деня  на 
раждането  женските  индивиди  следва  да не бъдат  третирани  със 
сонда  или по друг  начин , изискващ  манипулиране  с животното ; проп­  
ускането  на прилагането  на изпитвания  химикал  през този ден е за 
предпочитане  пред  смущаването  на процеса  на раждане . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 867
 
Чифтосване  
31. Всяка  женско  животно  от P трябва  да бъде  поставено  с едно  избрано  
на случаен  принцип  и несвързано  с него  мъжко  животно  от същата  
група  на определена  доза (чифтосване  1:1) докато  бъдат  наблюдавани  
доказателства  за копулация  или до изтичането  на 2-седмичен  срок . Ако 
няма  достатъчно  мъжки , например  поради  смъртност  при мъжките  
преди  чифтосването , тогава  мъжко  животно  (или животни ), което  
вече е било  чифтосвано , може  да бъде  чифтосано  (1:1) с второ  
женско  животно  (или животни ), така че всички  женски  животни  да 
бъдат  чифтосани . Денят , в който  се установи  доказателство  за чифт­  
осване  (наличие  на вагинална  запушалка  или сперматозоиди ), се 
определя  като ден 0 от бременността . Животните  следва  да бъдат  
разделени  възможно  най-скоро  след  наблюдаването  на доказателства  
за копулация . Ако не е извършено  чифтосване  след  2 седмици , 
животните  следва  да бъдат  разделени  без допълнителна  възможност  
за чифтосване . Животните  от всяка  двойка , определена  за чифтосване , 
трябва  да бъдат  ясно  идентифицирани  в данните  от изпитването . 
Брой  на животните  в котилото  
32. През  ден 4 след  раждането  броят  на животните  във всяко  котило  може  
да бъде  коригиран  посредством  елиминиране  на излишните  
новородени  животни  чрез подбор  на случаен  принцип , за да се 
получат , колкото  е възможно  по-точно , пет мъжки  и пет женски  
животни  в котило . Избирателното  елиминиране  на новородени  
животни , например  въз основа  на телесно  тегло , не е уместно . 
Когато  броят  на мъжките  или женските  новородени  животни  не дава 
възможност  да се получат  по пет животни  от пол за котило , приемлива  
е частична  корекция  (например , шест  мъжки  и четири  женски  
животни ). 
Подбор  на новородени  за изследвания  след  отбиването  (вж. фигура  1) 
33. В деня  на отбиването  (около  ПНД  21) до 20 новородени  за доза и за 
контролна  група  се подбират  от всички  налични  котила  за допълн­  
ителни  проучвания , и се съхраняват  до полово  съзряване  (освен  ако 
не се изисква  провеждане  на изпитване  на по-ранен  етап). 
Новородените  се избират  на случаен  принцип , с изключение  на това, 
че очевидно  малорасли  животни  (животни  с телесно  тегло  повече  от 
две стандартни  отклонения  под средното  тегло  на новородените  от 
съответното  котило ) следва  да не бъдат  включвани , тъй като е малко  
вероятно  те да са представителни  за третираната  група . 
През  ПНД  21 подбраните  новородени  от F 1 се разпределят  на случаен  
принцип  в една  от трите  кохорти  животни , както  следва : 
Кохорта  1 (1А и 1Б) = изпитване  за токсичност  за репродукцията /за 
развиващия  се организъм  
Кохорта  2 (2А и 2Б) = изпитване  за невротоксичност  за развиващия  се 
организъм  
Кохорта  3 = изпитване  за имунотоксичност  за развиващия  се организъм  
Кохорта  1А: Едно  мъжко  и едно  женско  животно  от котило  на група  
(20/пол/група ): приоритетен  подбор  за първична  оценка  на ефектите  
върху  репродуктивните  системи  и на общата  токсичност . 
Кохорта  1Б: Едно  мъжко  и едно  женско  животно  от котило  на група  
(20/пол/група ): приоритетен  подбор  за последваща  оценка  на репрод­  
уктивността  чрез чифтосване  на животни  от F 1 , когато  се оценяват  
(виж Ръководство  № 117 на ОИСР  (39)), и за получаване  на допълн­  
ителни  хистопатологични  данни  в случаи  на предполагаеми  токсични  
за репродукцията  химикали  или нарушители  на функциите  на 
ендокринната  система , или когато  резултатите  от кохорта  1А са 
неясни . 
Кохорта  2А: Общо  20 новородени  от група  (10 мъжки  и 10 женски  
животни  от група ; едно  мъжко  или едно  женско  от котило ) за 
невроповеденческо  изпитване , последвано  от оценка  на неврохистопат­  
ологията  като полово  зрели  животни . 
Кохорта  2Б: Общо  20 новородени  от група  (10 мъжки  и 10 женски  
животни  от група ; едно  мъжко  или едно  женско  от котило ) за оценка  
на неврохистопатологията  при отбиване  (ПНД  21 или ПНД  22). Ако 
няма  достатъчен  брой  животни , следва  да се отдава  предпочитание  на 
разпределението  на животни  към Кохорта  2А. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 868
 
Кохорта  3: Общо  20 новородени  от група  (10 мъжки  и 10 женски  
животни  от група ; едно  от котило , където  е възможно ). Възможно  е 
да са необходими  допълнителен  брой  новородени  от контролната  
група , за да послужат  като животни  за положителни  контроли  в 
изследването  за зависим  от Т-клетки  отговор  чрез образуване  на 
антитела  (TDAR) през ПНД  56 ± 3.  
34. Ако няма  достатъчен  брой  новородени  в дадено  котило , които  да 
служат  за всички  кохорти , с предимство  се ползва  Кохорта  1, тъй 
като тя може  да бъде  разширена  за производство  на поколение  F 2 . 
Допълнителни  новородени  могат  да бъдат  разпределени  в някоя  от 
кохортите  в случай  на специфични  опасения , например  ако за даден  
химикал  се предполага , че е невротоксичен , имунотоксичен  или 
токсичен  за репродукцията . Тези  новородени  могат  да бъдат  
използвани  за изследвания  на различни  времеви  точки  или за оценка  
на допълнителни  крайни  точки . Новородени , които  не са разпределени  
по кохорти , се предоставят  за клинична  биохимия  (параграф  55) и 
макроскопска  аутопсия  (параграф  68).  
Второ  чифтосване  на животните  от поколение  Р 
35. Второ  чифтосване  обикновено  не се препоръчва  за животните  от 
поколение  Р, тъй като то се извършва  за сметка  на загуба  на важна  
информация  за броя  на местата  на имплантация  (и по този начин  на 
данни  за пост -имплантацията  и перинаталните  загуби , показатели  за 
евентуален  тератогенен  потенциал ) за първото  котило . Необходимостта  
от проверка  или изясняване  на ефекта  върху  експонираните  женски  би 
била  удовлетворена  по-добре  чрез разширяване  на обхвата  на 
изследването  с оглед  включване  на чифтосването  на поколение  F 1 . 
Второ  чифтосване  на мъжки  животни  от P с нетретирани  женски  
обаче  винаги  е възможен  вариант  за изясняване  на неясни  находки  
или за по-нататъшно  характеризиране  на ефектите  върху  плодовит­  
остта , наблюдавани  при първото  чифтосване . 
ИНТРАВИТАЛНИ  НАБЛЮДЕНИЯ  
Клинични  наблюдения  
36. На животните  от P и подбраните  животни  от F 1 веднъж  дневно  се 
извършва  общо  клинично  наблюдение . В случай  на дозиране  чрез 
сонда  клиничните  наблюдения  следва  да бъдат  извършвани  преди  и 
след  дозирането  (за възможни  признаци  на токсичност , свързани  с 
върхова  концентрация  в плазмата ). Трябва  да се запишат  съответните  
изменения  в поведението , признаците  на трудно  или удължено  
раждане , както  и всички  признаци  на токсичност . Наблюдаването  на 
всички  животни  за наличие  на силна  токсичност , заболеваемост  и 
смъртност  се извършва  два пъти  дневно , а през двата  неработни  дни 
в края  на седмицата  — веднъж  дневно . 
37. В допълнение  веднъж  седмично  се извършва  по-задълбочен  преглед  на 
всички  животни  от Р и F 1 (след  отбиването ), като извършването  би 
било  удобно  при претегляне  на животното , което  би свело  до минимум  
стреса  от манипулирането . Наблюденията  следва  да се провеждат  и 
описват  внимателно , с използване  на точкови  системи , определени  от 
лабораторията , извършваща  изпитванията . Трябва  да бъде  направено  
усилие  да се осигурят  минимални  колебания  в условията  на 
изпитването . Отбелязваните  признаци  следва  да включват  промяна  в 
кожата , козината , очите , лигавиците , поява  на секреция  и екскреция , 
както  и автономна  активност  (напр . сълзене , пилоерекция , промяна  в 
големината  на зениците , необичаен  начин  на дишане ), без да се 
ограничават  до това. Следва  да се записват  също  и изменения  в похо­  
дката , стойката  и реакцията  при боравене , както  и наличието  на 
клонични  или тонични  движения , стереотипно  (например  прекомерно  
поддържане  на външния  вид, повтарящо  се обикаляне  в кръг ) или 
необичайно  поведение  (например  самоосакатяване , вървене  назад ). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 869
 
Телесно  тегло  и консумация  на храна /вода  
38. Животните  от P се претеглят  на първия  ден от дозирането , а след  това 
най-малко  веднъж  седмично . В допълнение , женските  животни  от P се 
претеглят  по време  на кърменето  в същите  дни, когато  се претеглят  
новородените  в техните  котила  (вж. параграф  44). Всички  животни  от 
F 1 се претеглят  индивидуално  при отбиване  (ПНД  21) и поне  веднъж  
седмично  след  това. Телесно  тегло  се записва  също  така в деня , в 
който  те достигнат  пубертет  (приключване  на отделянето  на преп­  
уциума  или настъпване  на отвореното  състояние  на вагината ). 
Всички  животни  се претеглят  при умъртвяването . 
39. По време  на изследването  консумацията  на храна  и вода  (в случай  на 
прилагане  на изпитвания  химикал  чрез питейната  вода ) се записва  поне  
веднъж  седмично  в същите  дни, в които  се измерва  телесното  тегло  на 
животните  (с изключение  на времето  на съвместно  обитаване ). Конс­  
умацията  на храна  във всяка  клетка  с животни  от F 1 се записва  всяка  
седмица , като се започва  от разпределянето  в съответната  кохорта . 
Естрални  цикли  
40. Предварителна  информация  относно  свързани  с изпитвания  химикал  
ефекти  върху  естралния  цикъл  може  вече да е налична  от предходни  
изследвания  за токсичност  с повтаряща  се доза, и може  да се използва  
при планирането  на специфичен  за изпитвания  химикал  протокол  за 
разширеното  изпитване  за токсичност  за репродукцията  в едно  
поколение . Обикновено  оценката  на естралната  цикличност  (чрез 
вагинална  цитология ) започва  в началото  на периода  на третиране  и 
продължава  до потвърждение  на чифтосването  или до края  на 2- 
седмичния  период  на чифтосване . Ако женските  животни  са били  
проверени  за нормален  естрален  цикъл  преди  третирането , тогава  е 
полезно  натривките  да продължат  след  започване  на третирането , но 
в случай  че възникне  съмнение  относно  неспецифични  ефекти  в 
началото  на третирането  (като например  първоначално  явно  
намаляване  на консумацията  на храна ) на животните  може  да се 
позволи  приспособяване  към третирането  за период  до две седмици  
преди  началото  на 2-седмичния  период  с натривки , водещ  до чифт­  
осване . Ако периодът  на третиране  на женските  е удължен  по този 
начин  (т.е. 4-седмично  третиране  преди  чифтосването ), следва  да 
бъде  разгледано  закупуване  на животни  на по-малка  възраст  и 
удължаване  на периода  третиране  на мъжките  преди  чифтосване . 
Вземането  на клетки  от влагалището /цервикса  следва  да бъде  вним­  
ателно , за да се избегне  увреждане  на лигавицата  и последващо  
индуциране  на псевдобременност  (10)(11).  
41. След  началото  на отвореното  състояние  на вагината  вагиналните  
натривки  трябва  да се изследват  ежедневно  при всички  женски  
животни  от F 1 в кохорта  1А, до записване  на първото  вроговяване , с 
цел да се определи  времевият  интервал  между  тези две събития . 
Естралните  цикли  при всички  женски  животни  от F 1 в кохорта  1А 
следва  също  да бъдат  наблюдавани  през период  от две седмици , 
започващ  около  ПНД  75. Освен  това, в случай  че чифтосването  
между  животни  от поколение  F  1 е необходимо , вагиналната  
цитология  при кохорта  1Б се следи  от момента  на чифтосването  до 
откриването  на доказателства  за копулация . 
Чифтосване  и бременност  
42. В допълнение  към стандартните  крайни  точки  (напр . телесно  тегло , 
консумация  на храна , клинични  наблюдения , включително  проверки  
за смъртност /заболеваемост ) се записват  датите  на чифтосване , датата  
на осеменяване  и датата  на раждане  и се изчисляват  интервалът  преди  
копулацията  (от чифтосването  до осеменяването ) и продължителността  
на бременността  (от осеменяването  до раждането ). Женските  животни  
от P трябва  да бъдат  внимателно  прегледани  по времето  на очакваното  
раждане  за наличие  на признаци  на трудно  раждане . Всякакви  
отклонения  в поведението  при гнезденето  или кърменето  следва  да 
се записват . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 870
 
43. Датата  на настъпване  на раждането  за майката  е ден 0 от кърменето  
(ДК 0), а за потомството  — постнатален  ден 0 (ПНД  0). Като  
алтернатива , всички  сравнения  могат  също  да се основават  на 
времето  след  чифтосването , за отстраняване  на невъзможността  за 
разграничаване  на данните  за постнаталното  развитие  поради  
разликите  в продължителността  на бременността ; въпреки  това, 
времето  на раждането  също  трябва  да бъде  записано . Това  е особено  
важно , когато  изпитваният  химикал  оказва  влияние  върху  продължит­  
елността  на бременността . 
Показатели  за потомството  
44. Всяко  котило  трябва  да бъде  прегледано  възможно  най-скоро  след  
раждането  (ПНД  0 или 1), за да се установи  броят  и полът  на 
новородените , броят  на мъртвородените  и на живите , както  и 
наличието  на макроскопски  аномалии  (видими  външно  аномалии , 
включително  вродена  цепка  на небцето ; подкожни  кръвоизливи ; 
отклоняващ  се от нормата  цвят  или строеж  на тъканта  на кожата : 
наличие  на пъпна  връв ; липса  на мляко  в стомаха ; наличие  на 
изсушени  секреции ). Освен  това, първият  клиничен  преглед  на 
новородените  следва  да включва  качествена  оценка  на телесната  
температура , състоянието  на активността  и реакцията  на манип­  
улиране . Намерените  мъртви  новородени  в ПНД  0 или по-късно  
следва  да бъдат  прегледани  за възможни  дефекти  и причина  за 
смъртта . Живите  новородени  се изброяват  и индивидуално  се 
измерва  теглото  им в ПНД  0 или ПНД  1, и на редовни  интервали  
след  това, например  в ПНД  4, 7, 14, и 21. Клиничните  прегледи , 
както  е приложимо  в зависимост  от възрастта  на животните , трябва  
да се повтарят  при претеглянето  на потомството  или по-често , ако са 
направени  конкретни  за дадения  случай  констатации  при раждането . 
Отбелязваните  симптоми  могат  да включват  външни  аномалии , 
изменения  в кожата , козината , очите , лигавиците , появяване  на 
секреции  и екскреции  и автономна  активност , но без да се ограничават  
само  до това. Следва  да се записват  също  и изменения  в походката , 
стойката  и отговора  при манипулиране , както  и наличието  на клонични  
или тонични  движения , стереотипно  или необичайно  поведение . 
45. Разстоянието  между  ануса  и половите  органи  (РАПО ) на всяко  
новородено  животно  трябва  да бъде  измерено  най-малко  веднъж  от 
ПНД  0 до ПНД  4. Телесното  тегло  на новороденото  следва  да бъде  
измерено  в деня  на измерване  на РАПО , и стойността  на РАПО  следва  
да бъде  нормализирана  към размера  на новороденото , за предпочитане  
към кубичния  корен  от телесното  тегло  (12). Наличието  на мамили / 
ареоли  у мъжките  новородени  трябва  да бъде  проверено  през ПНД  12 
или 13. 
46. Всички  избрани  животни  от F 1 се оценяват  ежедневно  за отделяне  на 
препуциума  или отворено  състояние  на влагалището  съответно  за 
мъжките /женските , като се започне  преди  очаквания  ден за пост­  
игането  на тези крайни  точки , за да се открие  ако половото  
съзряване  настъпва  рано . Всякакви  аномалии  в половите  органи , като 
персистиращо  влакнесто  образувание  във влагалището  (persistent 
vaginal thread), хипоспадия  (или цепка  на пениса ), следва  да се 
отбелязват . Полова  зрялост  на животните  от F 1 се сравнява  с физич­  
еското  развитие  чрез определяне  на възрастта  и телесното  тегло  при 
отделянето  на препуциума  или отвореното  състояние  на влагалището  
съответно  за мъжките /женските  (13).  
Оценка  на потенциалната  невротоксичност  за развиващия  се 
организъм  (кохорти  2А и 2Б) 
47. За оценките  на невротоксичността  следва  да се използват  десет  мъжки  
и 10 женски  животни  от кохорта  2А и 10 мъжки  и 10 женски  животни  
от кохорта  2Б от всяка  третирана  група  (за всяка  кохорта : 1 мъжко  или 
1 женско  от котило ; всички  котила  се представляват  от най-малко  по 1 
новородено ; избрани  на случаен  принцип ). Животните  от кохорта  2A 
трябва  да бъдат  подложени  на изпитване  чрез интензивни  слухови  
стимули , батерия  от функционални  изпитвания , двигателна  активност  
(вж. параграфи  48—50) и оценки  на невропатологията  (вж. параграфи  
74—75). Следва  да се положат  усилия , за да се гарантира , че 
колебанията  във всички  условия  на изпитването  са минимални  и не 
са систематически  свързани  с третирането . Между  променливите , ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 871
 
които  могат  да повлияят  върху  поведението , са равнището  на шума  
(напр . периодичен  шум ), температура , влажност , осветление , миризми , 
време  от деня  и свързани  с околната  среда  причини  за разсейване . 
Резултатите  от изследванията  за невротоксичност  трябва  да се 
тълкуват  във връзка  с подходящи  контролни  референтни  обхвати  от 
минали  периоди . Животните  от кохорта  2Б следва  да се използват  за 
оценка  на невропатологията  през ПНД  21 или ПНД  22 (вж. параграфи  
74—75).  
48. Изпитването  чрез интензивни  слухови  стимули  трябва  да се извърши  
през ПНД  24 (± 1 ден), с използването  на животни  от кохорта  2A. 
Денят  на изпитването  следва  да бъде  балансиран  между  третираните  
и контролните  групи . Всяка  сесия  се състои  от 50 опита . При 
извършването  на изпитването  чрез интензивни  слухови  стимули  
следва  да се определи  средната  амплитуда  на отговора  за всеки  блок  
от 10 опита  (5 блока  от 10 опита ), при оптимизирани  с оглед  
привикване  по време  на сесиите  условия  на изпитването . Тези  
процедури  трябва  да съответстват  на метод  за изпитване  B.53 (35).  
49. В подходящ  момент  между  ПНД  63 и ПНД  75, животните  от кохорта  
2A се подлагат  на батерия  от функционални  изпитвания  и автом­  
атизирано  изпитване  на двигателната  активност . Тези  процедури  
трябва  да съответстват  на методи  за изпитване  Б.43 (33) и Б.53 (35). 
Батерията  от функционални  изпитвания  включва  пълно  описание  на 
външния  вид, поведението  и функционалната  цялост  на субекта . 
Това  се оценява  чрез наблюдения  в клетката , която  обитава  животното , 
след  изваждането  му оттам  — в стандартизирана  арена  за наблюдение  
(на открито ), където  животното  се придвижва  свободно , както  и чрез 
изпитвания  с манипулиране . Изпитванията  трябва  да се провеждат  от 
най-малко  интерактивното  към най-интерактивното . Списък  с мерки  е 
представен  в приложение  1. Всички  животни  следва  да бъдат  набл­  
юдавани  внимателно  от обучени  наблюдатели , които  не са запознати  
с третирането  на животните , с използване  на стандартни  процедури  с 
оглед  свеждане  до минимум  на варирането  между  различните  наблюд­  
атели . Когато  е възможно , е препоръчително  един  и същ наблюдател  
да оценява  животните  в дадено  изпитване . Ако това не е възможно , се 
изисква  демонстриране  на надеждността  при резултатите  между  разл­  
ичните  наблюдатели . За всеки  параметър  в батерията  от поведенчески  
изпитвания  следва  да се използват  категорично  определени  мащаби  и 
критерии  за използване  на точкови  системи . Ако е възможно , следва  да 
бъдат  разработени  обективни  количествени  мерки  за наблюдаваните  
крайни  точки , включващи  субективно  класиране . Всяко  животно  се 
изпитва  поотделно  за двигателна  активност . Провеждането  на изпитв­  
ателната  сесия  следва  да бъде  с достатъчна  продължителност , за да се 
докаже  привикване  по време  на провеждането  за контролите . Двигат­  
елната  активност  трябва  да се наблюдава  посредством  автоматичен  
апарат  за записване  на активността , способен  да улови  и пониженията , 
и повишенията  в активността  (т.е. базовата  активност , измервана  от 
апарата , не следва  да бъде  с толкова  ниска  стойност , че да изключва  
възможността  за откриване  на пониженията , нито  с толкова  висока , че 
изключва  откриване  на повишенията  на активността ). Всяко  
устройство  следва  да бъде  изпитвано  чрез стандартни  процедури , за 
да се гарантира , доколкото  е възможно , надеждността  на работата  при 
различните  уреди  и в различните  дни. Доколкото  е възможно , 
третираните  групи  трябва  да бъдат  балансирани  между  устройствата . 
Групите  за третиране  следва  да бъдат  балансирани  по време  на 
изпитването  по такъв  начин , че да се избегне  невъзможност  за 
разграничаване  от циркадните  ритми  на активност . 
50. Ако съществуващата  информация  показва  необходимостта  от други  
функционални  изпитвания  (напр . сензорно , социално , когнитивно ), те 
трябва  да бъдат  интегрирани , без да се излага  на риск  целостта  на 
другите  оценки , извършени  при изследването . Ако това изпитване  се 
извършва  със същите  животни , използвани  за стандартното  изпитване  
чрез интензивни  слухови  стимули , батерията  от функционални  
изпитвания  и изпитването  на двигателната  активност , различните  
изпитвания  следва  да се планират  в графика  по такъв  начин , че да 
се сведе  до минимум  рискът  от нарушаване  на целостността  на тези 
изпитвания . Допълнителни  процедури  могат  да бъдат  особено  полезни , 
когато  при емпиричните  наблюдения , очакваните  ефекти , или различни  
аспекти , свързани  с механизма /начина  на действие  има показания  за 
специфичен  тип невротоксичност . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 872
 
Оценка  на потенциалната  имунотоксичност  за развиващия  се 
организъм  (кохорта  3) 
51. През  ПНД  56 (± 3 дни) 10 мъжки  и 10 женски  животни  от кохорта  3 от 
всяка  третирана  група  (1 мъжко  или 1 женско  от котило ; всички  
котила  се представляват  от най-малко  по 1 новородено ; избрани  на 
случаен  принцип ) следва  да бъдат  използвани  в изследване  за 
зависим  от Т-клетки  отговор  чрез образуване  на антитела , т.е. 
първичният  отговор  с IgM-антитела  на зависим  от Т-клетки  антиген , 
като SRBC (червени  кръвни  клетки  от овце ) или KLH (хемоцианин  от 
Megathura crenulata ), в съответствие  с актуалните  процедури  за 
изпитванията  за имунотоксичност  (14)(15). Отговорът  може  да бъде  
оценен  чрез отчитане  на специфични  плакообразуващи  клетки  (PFC) 
в далака  или чрез определяне  на титъра  на SRBC-специфични  или 
KLH-специфични  IgM-антитела  в серум  чрез ELISA, във върховата  
стойност  на отговора . Върховата  стойност  на отговора  се получава  
обикновено  четири  (отговор  чрез PFC) или пет (ELISA) дни след  
интравенозната  имунизация . Ако първичният  отговор  с антитела  се 
изследва  чрез преброяване  на плакообразуващи  клетки  е допустимо  
да се оценяват  подгрупи  от животни  в различни  дни, при условие : 
че имунизациите  и умъртвяването  на подгрупите  се определят  във 
времето  по такъв  начин , че PFC да бъдат  отчитани  във върховата  
стойност  на отговора ; че подгрупите  съдържат  равен  брой  мъжко  и 
женско  потомство  от всички  групи  на определена  доза, включително  
контролните ; и че подгрупите  се оценяват  на приблизително  същата  
постнатална  възраст .Експозицията  на изпитвания  химикал  продължава  
до деня  преди  започване  на събирането  на далаците  (за отговор  чрез 
PFC) или серума  (за изпитване  с ELISA).  
Последваща  оценка  на потенциалната  токсичност  за репрод­  
укцията  (кохорта  1Б) 
52. Третирането  на животните  от кохорта  1Б може  да бъде  поддържано  
след  ПНД  90 и, ако е необходимо , същите  могат  да бъдат  отглеждани  
за производство  на поколение  F 2 . Мъжките  и женските  животни  от 
същата  група  на определена  доза трябва  да бъдат  поставени  да съжит­  
елстват  (като се избягва  чифтосване  между  животни  от едно  и също  
котило ) за максимален  период  от две седмици , започващ  на ПНД  90 
или след  това, но не след  ПНД  120. Процедурите  следва  да бъдат  
сходни  на тези за животните  от поколение  Р. Въпреки  това, въз 
основа  на оценка  на значимостта  на доказателствения  материал , 
може  да е достатъчно  за умъртвяване  на котилата  на ПНД  4, вместо  
изследването  им до отбиването  или след  него . 
НАБЛЮДЕНИЯ  ПРИ  ПРЕКРАТЯВАНЕТО  
Клинична  биохимия /хематология  
53. Системните  ефекти  трябва  да бъдат  наблюдавани  при животните  от 
поколение  Р. При прекратяването  се вземат  кръвни  проби  на гладно  
от определено  място  от десет  избрани  по случаен  начин  мъжки  и 
женски  животни  от P на група  на определена  доза, съхраняват  се 
при подходящи  условия  и се подлагат  на частични  или пълни  хемат­  
ологични  и клинични  биохимични  изследвания  на T4 и TSH, или други  
прегледи , предложени  въз основа  на известните  ефекти  от профила  на 
изпитвания  химикал  (вж. Ръководство  № 151 на ОИСР  (40)). Следва  да 
бъдат  изследвани  следните  хематологични  параметри : хематокрит , 
концентрация  на хемоглобина , брой  на еритроцитите , общ и 
диференциален  брой  левкоцити , брой  на тромбоцитите , както  и 
измерване  на времето  на съсирване /потенциала  за съсирване  на 
кръвта . Изследванията  на плазма  и серум  следва  да включват : 
глюкоза , общ холестерол , уреа , креатинин , общо  белтъци , албумин  и 
поне  два ензима , показателни  за хепатоцелуларни  ефекти  (като аланин , 
аминотрансфераза , аспартатаминотрансфераза , алкална  фосфатаза , 
гама -глутамилтранспептидаза  и сорбитолдехидрогеназа ). Определянето  
на допълнителни  ензими  и жлъчни  киселини  може  да даде  полезна  
информация  при определени  обстоятелства . Освен  това кръв  от 
всички  животни  може  да бъде  вземана  и съхранявана  за евентуален  
анализ  на по-късен  етап, за да допринесе  за изясняване  на неясни  
ефекти  или да генерира  данни  за вътрешна  експозиция . Ако не се 
предвижда  второ  чифтосване  на животните  от поколение  Р, кръвните  
проби  се вземат  непосредствено  преди  процедурата  при планираното  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 873
 
умъртвяване , или като част от нея. В случай  на съхраняване  на 
животните , кръвните  проби  се вземат  няколко  дни преди  животните  
да бъдат  чифтосани  повторно . Освен  ако съществуващи  данни  от 
изследвания  с повтаряща  се доза показват , че параметърът  не е 
засегнат  от изпитвания  химикал , анализът  на урина  следва  да се 
извършва  преди  прекратяването , като се оценяват  следните  параметри : 
външен  вид, обем , осмолалност  или относителна  плътност , рН, общо  
белтъци  и глюкоза , кръв  и кръвни  клетки , клетъчни  остатъци . Урина  
също  може  да бъде  вземана  за наблюдаване  на екскрецията  на 
изпитвания  химикал  и/или метаболит (и). 
54. Системните  ефекти  трябва  също  да бъдат  наблюдавани  при животните  
от поколение  F 1 . При прекратяването  се вземат  кръвни  проби  на 
гладно  от определено  място  от десет  избрани  по случаен  начин  
мъжки  и женски  животни  от кохорта  1А на група  на определена  
доза, съхраняват  се при подходящи  условия  и се подлагат  на 
стандартни  клинични  биохимични  изследвания , включително  оценка  
на серумните  нива  на тироидни  хормони  (T4 и TSH), хематология  
(общ и диференциален  брой  левкоцити  и брой  на еритроцитите ) и 
оценки  на анализа  на урина . 
55. Излишъкът  от новородени  животни  в ПНД  4, се подлагат  на 
макроскопска  аутопсия  и се обръща  внимание  на измерването  на 
концентрациите  на серумен  тиреоиден  хормон  (T4). Ако е необходимо , 
кръвта  от новородените  (ПНД  4) може  да бъде  обединена  по котила  за 
анализи  на биохимия /тиреоиден  хормон . Кръвта  се събира  също  така и 
за анализ  на T4 и TSH от животни  след  отбиването , подложени  на 
макроскопска  аутопсия  през ПНД  22 (новородени  от поколение  F 1 , 
които  не са разпределени  по кохорти ). 
Параметри  за оценка  на състоянието  на сперматозоидите  
56. Параметрите  за оценка  на състоянието  на сперматозоидите  се измерват  
във всички  мъжки  индивиди  от поколение  Р, освен  ако няма  данни , 
които  да показват , че параметрите  за оценка  на състоянието  на 
сперматозоидите  не са засегнати  при 90-дневно  изследване . 
Изследването  на параметрите  за оценка  на състоянието  на спермато­  
зоидите  трябва  да бъде  извършено  на всички  мъжки  животни  от 
кохорта  1A.  
57. При прекратяването  теглата  на тестисите  и епидидимите  се записват  за 
всички  мъжки  животни  от Р и F 1 (кохорта  1А). Най-малко  един  тестис  
и един  епидидим  се запазват  за хистопатологично  изследване . Оста­  
налият  епидидим  се използва  за изброяване  на резервите  от 
сперматозоиди  от опашката  на епидидима  (16)(17). В допълнение , 
сперматозоидите  от опашката  на епидидима  (или семепровода ) се 
събират  чрез използването  на методи , свеждащи  до минимум  
уврежданията  с оглед  оценка  на подвижността  и морфологията  на 
сперматозоидите  (18).  
58. Подвижността  на сперматозоидите  може  да бъде  оценена  
непосредствено  след  умъртвяването  или записана  за по-късен  анализ . 
Процентът  на прогресивно  подвижните  сперматозоиди  може  да се 
определи  субективно  или обективно  чрез компютърен  анализ  на 
движението  (19)(20)(21)(22)(23)(24). За оценка  на морфологията  на 
сперматозоидите , проба  от сперматозоиди  от епидидима  (или 
семепровода ) се изследват  като фиксирани  или влажни  препарати  
(25) и най-малко  200 сперматозоиди  от проба  се класифицират  или 
като нормални  (както  главата , така и средната  част/опашката  
изглеждат  нормални ), или като отклоняващи  се от нормата . Примери  
за морфологични  отклонения  са: слепване , наличие  на глави , отделени  
от тялото  и опашката , промени  във формата  на главите  и/или опашките  
(26). Промени  във формата  на главите  или големи  глави  на 
сперматозоиди  може  да показват  дефекти  в узряването  на спермато­  
зоидите . 
59. Ако пробите  от сперматозоиди  са замразени , натривките  са фиксирани  
и изображенията  за анализ  на движението  на сперматозоидите  са 
записани  по време  на аутопсията  (27), последващият  анализ  може  да 
бъде  ограничен  до мъжките  от контролните  групи  и групите  на висока  
доза. Въпреки  това, ако се наблюдават  ефекти , свързани  с третирането , 
следва  също  да бъдат  оценени  и групите  на по-ниска  доза. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 874
 
Макроскопска  аутопсия  
60. В момента  на умъртвяването  или при настъпването  на преждевременна  
смърт  по време  на изпитването  следва  да се извърши  аутопсия  и 
макроскопски  оглед  на всички  животни  от P и F 1 , за да се установи  
наличието  на структурни  аномалии  или патологични  промени . Особено  
внимание  при огледа  трябва  да се обърне  на органите  на половата  
система . Новородените , които  са били  в терминално  състояние  и са 
умъртвени  по хуманен  начин , или са умрели , трябва  бъдат  записани  и, 
ако труповете  им не са мацерирани , да се изследват  за възможни  
дефекти  и/или причини  за смъртта  и труповете  им да бъдат  запазени . 
61. За полово  зрели  женски  от P и F 1 се изследва  вагинална  натривка  в 
деня  на аутопсия , за да се определи  етапът  на естралния  цикъл  и да се 
даде  възможност  за корелация  с хистопатологичното  изследване  на 
репродуктивните  органи . Матките  на всички  женски  животни  от P (и 
женски  от F 1 , ако е приложимо ) се изследват  за наличие  и брой  на 
местата  на имплантация , по начин , който  не нарушава  хистопатолог­  
ичното  изследване . 
Тегло  на органи  и съхранение  на тъкани  — полово  зрели  животни  
от P и F 1 
62. Към момента  на прекратяване  телесните  тегла  и теглата  в мокро  
състояние  на органите , изброени  по-долу , от всички  животни  от 
поколение  Р и всички  полово  зрели  животни  от F 1 от всички  
относими  кохорти  (както  е посочено  по-долу ), се определят  колкото  
е възможно  по-бързо  след  дисекцията , за да се избегне  изсъхването  им. 
Тези  органи  следва  впоследствие  да бъдат  запазени  при подходящи  
условия . Освен  ако не е указано  друго , всеки  от чифтните  органи  
може  да се измери  самостоятелно  или в комбинация , в съответствие  
с обичайните  практики  на изпитващата  лаборатория . 
— Матка  (с яйцепровод  и шийка  на матката ), яйчници  
— Тестиси , епидидими  (общо  и опашката  за проби , използвани  за 
преброяване  на сперматозоиди ) 
— Простата  (комбинирано  дорзолатерален  и вентрален  дял). Трябва  да 
се внимава  при почистване  на простатата  и семенните  мехурчета  с 
коагулиращите  жлези , за да се избегне  пункция  на изпълнените  с 
течност  семенни  мехурчета . В случай  на свързан  с третирането  
ефект  върху  общото  тегло  на простатата , на дорзолатералния  и 
вентралния  дял следва  внимателно  да се извърши  дисекция  след  
фиксиране , и да се претеглят  поотделно . 
— Семенни  мехурчета  с коагулиращите  жлези  и течното  им 
съдържимо  (измерват  се заедно ) 
— Мозък , черен  дроб , бъбреци , сърце , далак , тимус , хипофиза , 
щитовидна  жлеза  (след  фиксиране ), надбъбречни  жлези  и познати  
прицелни  органи  или тъкани . 
63. В допълнение  към органите , изброени  по-горе, при подходящи  условия  
следва  да бъдат  запазени  проби  от периферен  нерв , мускул , гръбначен  
мозък , око плюс  очен  нерв , стомашно -чревен  тракт , пикочен  мехур , 
бял дроб , трахея  (с прикрепени  щитовидна  жлеза  и околощитовидна  
жлеза ), костен  мозък , семепровод  (мъжки  животни ), млечна  жлеза  
(мъжки  и женски  животни ) и влагалище . 
64. Всички  органи  на животните  от кохорта  1A се претеглят  и съхраняват  
за хистопатологично  изследване . 
65. За изследването  на пренатално  и постнатално  индуцираните  имунот­  
оксични  ефекти  10 мъжки  и 10 женски  животни  от кохорта  1А от 
всяка  третирана  група  (1 мъжко  или 1 женско  от котило ; всички  
котила  се представляват  от най-малко  по 1 новородено ; избрани  на 
случаен  принцип ) се подлагат  на следното  при прекратяване : 
— претегляне  на лимфните  възли , свързани  с пътя  на експозиция  и 
отдалечени  от него  (в допълнение  към теглото  на надбъбречните  
жлези , тимуса  и далака , вече измерено  за всички  животни  от 
кохорта  1А) ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 875
 
— анализ  на далачната  субпопулация  лимфоцити  (CD4+ и CD8+ 
T-лимфоцити , B-лимфоцити , както  и клетки  естествени  убийци ) с 
използване  на едната  половина  от далака , като другата  половина  на 
далака  се съхранява  за хистопатологично  изследване . 
Анализът  на далачните  субпопулации  лимфоцити  в неимунизирани  
животни  (кохорта  1А) определя  дали  експозицията  е свързана  с 
изместване  на разпределението  при имунологичното  стационарно  
състояние  на „помощниците “ (CD 4 +) или цитотоксичните  (CD 8 +) 
T-лимфоцити  или клетките  естествени  убийци  (NK-клетки ) (бързи  
отговори  на неопластични  клетки  и патогени ). 
66. Следните  органи  на животните  от кохорта  1Б се претеглят  и съответ­  
стващите  тъкани  се обработват  във вид на блокчета : 
— Влагалище  (не претеглено ) 
— Матка , включително  шийката  
— Яйчници  
— Тестиси  (най-малко  един ) 
— Епидидими  
— Семенни  мехурчета  с коагулиращите  жлези  
— Простата  
— Хипофиза  
— Идентифицирани  прицелни  органи  
При кохорта  1Б следва  да се извърши  хистопатология , ако резултатите  
от кохорта  1А са неясни , или в случаи  на предполагаеми  токсични  за 
репродукцията  химикали  или нарушители  на функциите  на 
ендокринната  система . 
67. Кохорти  2А и 2Б: Изпитване  за невротоксичност  за развиващия  се 
организъм  (ПНД  21 или ПНД  22 и полово  зряло  потомство ). 
Животните  от кохорта  2А се умъртвяват  след  поведенческите  
изпитвания , записва  се теглото  на мозъка  им и им се извършва  
пълна  неврохистопатология  за целите  на оценката  на невротоксич­  
ността . Животните  от кохорта  2Б се умъртвяват  през ПНД  21 или 
ПНД  22, записва  се теглото  на мозъка  им и се извършва  микроскопски  
оглед  на мозъка  за целите  на оценката  на невротоксичността . 
Фиксирането  чрез перфузия  е задължително  за животните  от кохорта  
2A и по избор  за животните  от кохорта  2Б, съгласно  метод  за 
изпитване  Б.53 (35).  
Тегло  на органи  и съхранение  на тъкани  — отбити  животни  от F 1 
68. Новородените , които  не са разпределени  по кохорти , включително  
малорасли  животни , се умъртвяват  след  отбиването  на ПНД  22, 
освен  ако резултатите  показват  нужда  от допълнителни  интравитални  
проучвания . Умъртвените  новородени  животни  се подлагат  на 
макроскопска  аутопсия , включително  оценка  на репродуктивните  
органи , както  е описано  в параграфи  62 и 63. Следва  да се претеглят  
и съхраняват  при подходящи  условия  мозък , далак  и тимус  от до 10 
новородени  животни  от пол за група  от толкова  на брой  котила , 
колкото  е възможно . В допълнение , тъкани  от млечните  жлези  на 
тези мъжки  и женски  новородени  животни  могат  да бъдат  съхранени  
за по-нататъшен  микроскопски  анализ  ( 1 ) (вж. Ръководство  № 151 на 
ОИСР  (40)). Макроскопските  аномалии  и прицелните  тъкани  следва  да 
бъдат  запазени  за възможно  хистологично  изследване . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 876  
( 1 ) Изследванията  показват , че млечната  жлеза , особено  при развитието  на млечните  
жлези  в ранния  период , е чувствителна  крайна  точка  за действието  на естрогена . 
Препоръчва  се крайните  точки , включващи  млечните  жлези  на новородени  от двата  
пола , да бъдат  включени  в настоящия  метод  за изпитване  при валидирането  му.
 Хистопатология  — животни  от поколение  P 
69. Пълно  хистопатологично  изследване  на органите , посочени  в 
параграфи  62 и 63, се извършва  за всички  животни  от контролната  
група  и групата  на висока  доза от поколение  Р. Органи , показващи  
свързани  с третирането  изменения , следва  също  да бъдат  изследвани  
при всички  животни  в групите  на по-ниска  доза, за да се подпомогне  
определянето  на NOAEL. Освен  това на хистопатологично  изследване  
трябва  да бъдат  подложени  репродуктивните  органи  на всички  
животни , при които  има съмнение  за понижен  фертилитет , например  
тези, при които  чифтосването , оплождането  или зачеването  са били  
неуспешни , тези, които  не са родили  здраво  потомство , както  и тези, 
при които  е засегнат  естралният  цикъл  или се установяват  промени  в 
броя , подвижността  или морфологията  на сперматозоидите . 
Хистопатология  — животни  от поколение  F 1 
Животни  от кохорта  1 
70. Пълно  хистопатологично  изследване  на органите , посочени  в 
параграфи  62 и 63, се извършва  за всички  полово  зрели  животни  от 
кохорта  1А от контролната  група  и групата  на висока  доза. Всички  
котила  следва  да се представляват  от най-малко  по 1 новородено  от 
пол. Органи  и тъкани , показващи  свързани  с третирането  изменения , и 
всички  макроскопски  увреждания  следва  също  да бъдат  изследвани  
при всички  животни  в групите  на по-ниска  доза, за да се подпомогне  
определянето  на NOAEL. За оценката  на пренатално  и постнатално  
индуцираните  ефекти  върху  лимфоидните  органи  също  така следва  
да се оцени  и хистопатологията  на събраните  лимфни  възли  и костен  
мозък  от 10 мъжки  и 10 женски  животни  от кохорта  1А, освен  хист­  
опатологичната  оценка  на тимуса , далака , и надбъбречните  жлези , 
която  вече е извършена  за всички  животни  от кохорта  1А. 
71. Тъкани  от репродуктивната  и ендокринната  система  от всички  
животни  от кохорта  1Б, обработени  във вид на блокчета , както  е 
описано  в параграф  66, трябва  да се изследват  за хистопатология  в 
случаи  на предполагаеми  токсични  за репродукцията  химикали  или 
нарушители  на функциите  на ендокринната  система . На кохорта  1Б 
също  трябва  да бъде  направено  хистологично  изследване , ако 
резултатите  от кохорта  1А са неясни . 
72. Яйчниците  на полово  зрелите  женски  животни  трябва  да съдържат  
примордиални  и зреещи  фоликули , както  и жълти  тела; следователно  
хистопатологичното  изследване  следва  да е насочено  към количествена  
оценка  на примордиални  и малки  зреещи  фоликули , както  и жълти  
тела, в женски  животни  от F 1 ; броят  на животните , изборът  на 
срезове  от яйчниците  и броят  на срезовете , включени  в изследваната  
извадка , трябва  да бъдат  обосновани  от статистическа  гледна  точка  във 
връзка  с използваната  процедура  за количествена  оценка . Изброяването  
на фоликулите  може  първо  да се извърши  при животните  от 
контролните  групи  и групите  на висока  доза и, в случай  на неблаг­  
оприятен  ефект  при последните , следва  да бъдат  изследвани  групите  на 
по-ниски  дози . Изследването  следва  да включва  определяне  на броя  на 
примордиалните  фоликули , които  могат  да се изброят  заедно  с малките  
зреещи  фоликули , за сравнение  с третираните  и контролните  яйчници  
(вж. Ръководство  № 151 на ОИСР  (40)). Оценката  на жълтите  тела 
следва  да се извършва  паралелно  с изпитването  на естралната  цикл­  
ичност , така че етапът  на цикъла  да може  да бъде  взет предвид  при 
оценката . Яйцепроводът , матката  и влагалището  се изследват  за 
подходящо  типично  за органа  развитие . 
73. Подробни  изследвания  на тестикуларната  хистопатология  се извършват  
на мъжките  от поколение  F 1 , за да се определят  свързани  с третирането  
ефекти  върху  диференцирането  и развитието  на тестисите  и върху  
сперматогенезата  (38). Когато  е възможно , трябва  да бъдат  изследвани  
срезове  от мрежата  на тестиса . Главата , тялото  и опашката  на 
епидидима  и семепровода  се изследват  за подходящо  типично  за 
органа  развитие , както  и по отношение  на параметрите , изисквани  за 
мъжките  от P. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 877
 
Животни  от кохорта  2 
74. Неврохистопатологията  се извършва  за всички  животни  от кохорта  2А 
от групата  на висока  доза и контролната  група  по пол след  завършване  
на невроповеденческите  изпитвания  (след  ПНД  75, но не след  ПНД  
90). Хистопатологията  на мозъка  се извършва  за всички  животни  от 
кохорта  2Б от групата  на висока  доза и контролната  група  по пол през 
ПНД  21 или ПНД  22. Органи  или тъкани , показващи  свързани  с 
третирането  изменения , следва  също  да бъдат  изследвани  при 
животните  в групите  на по-ниска  доза, за да се подпомогне  
определянето  на NOAEL. За животни  от кохорти  2А и 2Б се 
изследват  множество  срезове  от мозъка , за да се даде  възможност  за 
изследване  на обонятелните  луковици , кората  на големия  мозък , 
хипокампа , базалните  ганглии , таламуса , хипоталамуса , средния  
мозък  (тектум , тегментум  и малкомозъчни  крачета ), мозъчен  ствол  и 
малък  мозък . Само  за кохорта  2А се изследват  очите  (ретината  и очен  
нерв ) и проби  от периферен  нерв , мускул  и гръбначен  мозък . Всички  
неврохистологични  процедури  трябва  да съответстват  на метод  за 
изпитване  B.53 (35).  
75. Следва  да се извършат  морфометрични  (количествени ) оценки  на 
представителни  зони  на мозъка  (хомоложни  срезове , внимателно  
подбрани  въз основа  на надеждни  микроскопски  ориентири ) и 
същите  могат  да включват  линейни  измервания  или измерване  на 
площ  на специфични  области  от мозъка . Следва  да бъдат  взети  най- 
малко  три последователни  среза  при всеки  ориентир  (равнище ), с цел 
да се избере  най-хомоложният  и представителен  срез за оценяваната  
специфична  област  от мозъка . Невропатологът  следва  да направи  
подходяща  професионална  преценка  относно  това дали  приготвените  
за измерване  срезове  са хомоложни  с други  в набора  от проби  и оттам  
дали  са подходящи  за включване , тъй като в частност  линейните  
измервания  могат  да се променят  в рамките  на относително  кратко  
разстояние  (28). Нехомоложни  срезове  не следва  да се използват . 
Въпреки  че целта  е да се вземат  проби  от всички  животни , 
предназначени  за тази цел (10 от пол от ниво  на доза), по-малък  
брой  все още може  да е подходящ . Пробите  от по-малко  от 6 
животни  от всеки  пол и ниво  на доза обаче  по принцип  не се считат  
за достатъчни  за целите  на настоящия  метод  за изпитване . Може  да се 
използва  стереология  за установяване  на свързани  с третирането  
ефекти  върху  параметри  като обем  или брой  на клетките  за спец­  
ифични  невроанатомични  области . Всички  аспекти  от подготовката  
на проби  от тъкани , от фиксирането  на тъкани  през дисекцията  на 
проби  от тъкани , обработката  на тъкани  и оцветяването  на предм­  
етните  стъкла , трябва  да са по план , балансиран  така, че всяка  
партида  да съдържа  представителни  извадки  от всяка  група  с 
определена  доза. Когато  трябва  да се използва  морфометричен  или 
стереологичен  анализ , мозъчна  тъкан  следва  да бъде  включена  в 
подходяща  среда  при всички  нива  на доза и по едно  и също  време , 
за да бъдат  избегнати  артефакти  на свиване , свързани  с продължително  
съхранение  във фиксатор . 
ДОКЛАДВАНЕ  
Данни  
76. Данните  се докладват  индивидуално  и обобщени  в табличен  вид. 
Когато  това е приложимо , за всяка  изпитвана  група  и всяко  
поколение  следва  да бъдат  докладвани : броят  на животните  в 
началото  на изследването , броят  на животните , които  са открити  
мъртви  по време  на изследването  или са били  умъртвени  по хуманни  
причини , времето  на смъртта  или умъртвяването  по хуманни  причини , 
броят  на фертилните  животни , броят  на бременните  женски  животни , 
броят  на женските  животни , даващи  котило  и броят  на животните  с 
проявени  признаци  на токсичност . Следва  също  да бъде  докладвано  
описание  на токсичността , включително  времето  на настъпване , продъ­  
лжителността  и силата . 
77. Резултатите , изразени  количествено , трябва  да се оценят  чрез 
подходящ  и общоприет  статистически  метод . Статистическите  методи  
следва  да се подбират  като част от плана  на изследването  и следва  по 
подходящ  начин  да включват  данни , които  не са с нормално  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 878
 
разпределение  (например  данни  от броене ), цензурирани  данни  (напр . 
ограничено  време  за наблюдение ), измервания , които  не са независими  
(например  ефекти  върху  котилата  и повтарящи  се мерки ), както  и 
нееднакви  дисперсии . Обобщените  смесени  линейни  модели  и 
моделите  доза-отговор  обхващат  широк  клас от аналитични  
инструменти , които  могат  да бъдат  подходящи  за обработка  на 
данните , получени  съгласно  настоящия  метод  за изпитване . Докладът  
трябва  да включва  достатъчно  информация  за използваните  метод  за 
анализ  и компютърна  програма , така че да може  да бъде  извършена  
оценка /повторна  оценка  от независим  проверяващ /статистик . 
Оценка  на резултатите  
78. Констатациите  следва  да се оценяват  въз основа  на наблюдаваните  
ефекти , включително  данните  от макроскопската  аутопсия  и 
микроскопските  находки . Оценката  включва  връзката  или липсата  на 
връзка  между  дозата  и наличието , честотата  и силата  на отклоненията  
от нормата , включително  макроскопските  увреждания . Следва  да бъдат  
оценени  и прицелните  органи , плодовитостта , клиничните  аномалии , 
параметрите  на репродукцията  и котилото , измененията  в телесното  
тегло , смъртността  и всякакви  други  ефекти , свързани  с токсичността  
и развиващия  се организъм . Специално  внимание  следва  да се обърне  
на специфичните  за пола  изменения . Физичните  и химичните  свойства  
на изпитвания  химикал  и, когато  са налични , данните  от ТК, включ­  
ително  преминаване  през плацентата  и екскреция  чрез млякото , трябва  
да се вземат  под внимание  при оценката  на резултатите  от 
изпитването . 
Доклад  от изпитването  
79. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация , 
получена  от животните  от поколения  P, F  1 и F 2 в рамките  на 
настоящото  изследване  (където  е уместно ): 
Изпитван  химикал : 
— Всяка  налична  информация  за химичните , токсикокинетичните  и 
токсикодинамичните  свойства  на изпитвания  химикал ; 
— Данни  за идентифициране ; 
— Чистота ; 
Носител  (когато  се използва  такъв ): 
— Обосновка  за избора  на носител , когато  е различен  от вода ; 
Изпитвани  животни : 
— Използван  вид/порода ; 
— Брой , възраст  и пол на животните ; 
— Източник , условия  на отглеждане , хранителен  режим , материали  за 
гнездене  и т.н.; 
— Индивидуално  тегло  на животните  в началото  на изпитването ; 
— Данни  за вагинални  натривки  за женски  животни  от P преди  
започване  на третирането  (ако са събрани  данни  към посочения  
момент ); 
— Записи  за чифтосване  за поколение  Р, указващи  мъжкия  и женския  
партньор  от чифтосването  и успешна  копулация ; 
— Записи  за котилото , от което  произхожда  животното  за полово  
зрелите  животни  от поколение  F 1 ; 
Условия  на изпитване : 
— Обосновка  за избора  на нивото  на доза; 
— Подробна  информация  за състава  на изпитвания  химикал /изг­ 
отвянето  на хранителния  режим , достигнати  концентрации ; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 879
 
— Стабилност  и хомогенност  на сместа  в носителя  (напр . хранителен  
режим , питейна  вода ), в кръвта  и/или в млякото  при условията  на 
използване  и на съхранение  между  използванията ; 
— Подробна  информация  относно  прилагането  на изпитвания  
химикал ; 
— Превръщане  от концентрация  на изпитвания  химикал  в храна / 
питейна  вода  (ppm) в действителна  доза (mg на kg телесно  тегло  
дневно ), ако е приложимо ; 
— Подробна  информация  за качеството  на храната  и водата  (включ­  
ително  състав  на хранителния  режим , ако е на разположение ); 
— Подробно  описание  на процедурата  за избор  на случаен  принцип  
на новородени  животни  за бракуване , както  и за разпределяне  на 
новородени  животни  по групи  за изпитване ; 
— Условия  на околната  среда ; 
— Списък  на изследователския  персонал , включително  и профес­  
ионално  обучение ; 
Резултати  (обобщение  и индивидуални  данни  по пол и доза ): 
— Консумацията  на храна , консумацията  на вода , ако има данни , 
хранителна  ефективност  (наддаване  на телесно  тегло  на грам  конс­  
умирана  храна , с изключение  на периода  на съжителството  и по 
време  на кърмене ), както  и консумация  на изпитван  химикал  (за 
прилагане  чрез хранителен  режим /питейна  вода ) за животни  от Р и 
F 1 ; 
— Данни  за абсорбция , ако са налични ; 
— Данни  за телесното  тегло  за животните  от поколение  Р; 
— Данни  за телесното  тегло  на избраните  животни  от F 1 ; 
— Време  на настъпване  на смъртта  по време  на изследването , или 
дали  животните  са преживели  до прекратяването ; 
— Природа , сила  и продължителност  на клиничните  наблюдения  
(независимо  обратими  или необратими ); 
— Данни  от хематология , анализ  на урина  и клинична  химия , включ­  
ително  TSH и T4; 
— Фенотипен  анализ  на далачни  клетки  (T-, B-, NK- клетки ); 
— Клетъчност  на костен  мозък ; 
— Данни  за токсичен  отговор ; 
— Брой  на женските  животни  от поколение  Р и F 1 с нормален  или 
отклоняващ  се от нормата  естрален  цикъл  и продължителност  на 
цикъла ; 
— Време  до копулация  (интервал  преди  копулацията , брой  дни от 
чифтосването  до копулацията ); 
— Токсични  или други  ефекти  върху  репродукцията , в това число  
брой  и процентни  дялове  на животните , които  са преминали  през 
копулация , бременност , раждане  и кърмене , на мъжките  животни , 
предизвикали  бременност , на женските  животни  с признаци  на 
трудно /продължително  раждане ; 
— Продължителност  на бременността  и, при наличност , раждане ; 
— Брой  на имплантациите , големината  на котилото  и процент  на 
мъжки  новородени ; 
— Брой  и процент  на постимплантационната  загуба , живородени  и 
мъртвородени ; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 880
 
— Данни  за тегло  на котилото  и на новородените  (мъжки , женски  и 
комбинирано ), брой  на малораслите  животни , ако е определен ; 
— Брой  новородени  с видими  макроскопски  аномалии ; 
— Токсични  или други  ефекти  върху  поколението , постнатален  
растеж , жизнеспособност  и т.н.; 
— Данни  за физическите  ориентири  на потомството  и други  данни  за 
постнаталното  развитие  на организма ; 
— Данни  за полово  съзряване  на животните  от F 1 ; 
— Данни  за функционалните  наблюдения  при новородените  и при 
полово  зрелите  животни , когато  това е приложимо ; 
— Телесно  тегло  в деня  на умъртвяването  и данни  за абсолютно  и за 
относително  тегло  на органи  за полово  зрелите  животни  от P и F 1 ; 
— Находки  при аутопсията ; 
— Подробно  описание  на всички  хистопатологични  находки ; 
— Общ  брой  на сперматозоидите  в опашката  на епидидима , процент  
на прогресивно  подвижните  сперматозоиди , процент  на спермато­  
зоидите  с нормална  морфология  и процент  на сперматозоидите  с 
всеки  вид аномалия , който  е установен  за мъжки  животни  от P и 
F 1 ; 
— Брой  и етапи  на узряване  на фоликули , съдържащи  се в яйчниците  
на женски  животни  от P и F 1 , когато  е приложимо ; 
— Изброяване  на жълтите  тела в яйчниците  на женски  животни  от F 1 ; 
— Статистическа  обработка  на резултатите , ако е подходящо ; 
Параметри  на кохорта  2: 
— Подробно  описание  на процедурите , които  се използват  за 
стандартизиране  на наблюденията , и на процедурите , както  и на 
работните  определения  при използване  на точкови  системи  за набл­  
юденията ; 
— Списък  на всички  използвани  процедури  на изпитване , както  и 
обосновка  за тяхното  използване ; 
— Подробности  за използваните  поведенчески /функционални , невроп­  
атологични  и морфометрични  процедури , включително  
информация  и подробности  относно  автоматизираните  устройства ; 
— Процедури  за калибриране  и гарантиране  на равностойността  на 
устройствата  и на балансирането  на третираните  групи  в 
процедурите  за изпитване ; 
— Кратка  обосновка , която  обяснява  всички  решения , свързани  с 
професионална  преценка ; 
— Подробности  за всички  поведенчески /функционални , невропат­  
ологични  и морфометрични  констатации  по пол и група  на 
определена  доза, включващи  както  увеличенията , така и 
намаленията  в сравнение  с контролите ; 
— Тегло  на мозъка ; 
— Всякакви  диагнози , получени  от неврологични  признаци  и 
увреждания , включително  появили  се по естествен  път заболявания  
или състояния ; 
— Изображения  на репрезентативни  находки ; 
— Изображения  с незначително  увеличение  за установяване  на 
хомоложността  на срезовете , използвани  за морфометрията ; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 881
 
— Статистическа  обработка  на резултатите , включително  статист­  
ически  модели , използвани  за анализ  на данните  и резултатите , 
независимо  от това дали  са значими , или не; 
— Връзка  на всякакви  други  токсични  ефекти  със заключението  за 
невротоксичния  потенциал  на изпитвания  химикал , по пол и 
група  на определена  доза; 
— Въздействие  на всякаква  токсикокинетична  информация  върху  
заключенията ; 
— Данни  в подкрепа  на надеждността  и чувствителността  на метода  за 
изпитване  (т.е. положителни  и контролни  данни  за минали  
периоди ); 
— Зависимости  (ако има такива ) между  невропатологични  и функц­  
ионални  ефекти ; 
— NOAEL или еталонна  доза за майки  и потомство , по пол и група  на 
определена  доза; 
— Обсъждане  на общото  тълкуване  на данните  въз основа  на резулт­  
атите , включително  заключение  дали  химикалът  е причинил  
невротоксичност  за развиващия  се организъм , и NOAEL.  
Параметри  на кохорта  3: 
— Титри  на IgM-антитела  в серума  (сенсибилизация  към SRBC или 
KLH) или брой  на IgM PFC в далака  (сенсибилизация  към SRBC);  
— Прилагането  на метода  TDAR следва  да бъде  потвърдено  като част 
от процеса  на оптимизация  от лаборатория , извършваща  
изследването  за първи  път, и периодично  (например  ежегодно ) от 
всички  лаборатории ; 
— Обсъждане  на общото  тълкуване  на данните  въз основа  на резулт­  
атите , включително  заключение  дали  химикалът  е причинил  
имунотоксичност  за развиващия  се организъм , и NOAEL;  
Обсъждане  на резултатите  
Заключения , включително  стойности  на NOAEL, за ефектите  върху  
родителите  и потомството  
Цялата  информация , която  не е получена  по време  на изследването , но 
е полезна  при тълкуването  на резултатите  (напр . сходства  на ефектите  
на всички  известни  невротоксични  химикали ), следва  също  да бъде  
предоставена . 
Тълкуване  на резултатите  
80. Чрез  разширеното  изследване  за токсичност  за репродукцията  в едно  
поколение , според  необходимостта , се осигурява  информация  за 
ефектите  от повтарящата  се експозиция  на даден  химикал  през 
всички  фази  на репродуктивния  цикъл . По-специално  изследването  
дава информация  за репродуктивната  система , както  и за развитието , 
растежа , преживяемостта  и функционалните  крайни  точки  на 
потомството  до ПНД  90. 
81. При тълкуването  на резултатите  от изследването  следва  да се вземе  
предвид  цялата  налична  информация  за химикала , включително  
физични , химични , токсикокинетични  и токсикодинамични  свойства , 
наличната  относима  информация  за структурни  аналози , и резултатите  
от предходни  изследвания  за токсичност  с изпитвания  химикал  (напр . 
остра  токсичност , токсичност  след  повтарящо  се прилагане , меха­  
нистични  изследвания  и изследвания  за оценка  на наличието  на 
съществени  качествени  и количествени  различия  в метаболитните  
свойства  in vivo /in vitro  при различните  видове ). Резултатите  от 
макроскопската  аутоприя  и телесното  тегло  трябва  да се оценяват  в 
контекста  на наблюденията , проведени  по време  на други  изследвания  
с повтаряща  се доза, когато  това е възможно . Намаленията  в растежа  
на потомството  биха  могли  да се разглеждат  във връзка  с влияние  на 
изпитвания  химикал  върху  състава  на млякото  (29).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 882
 
Кохорта  2 (невротоксичност  за развиващия  се организъм ) 
82. Резултатите  от невроповеденческите  и невропатологическите  
изследвания  следва  да се тълкуват  в контекста  на всички  находки , с 
използване  на основан  на тежестта  на доказателствата  подход  с 
експертна  преценка . Моделите  на поведенчески  или морфологични  
констатации , ако има такива , както  и доказателства  за зависимостта  
доза-отговор  следва  да бъдат  обсъдени . В това охарактеризиране  
трябва  да бъде  включена  оценката  на на невротоксичността  за 
развиващия  се организъм , включително  епидемиологични  изследвания  
върху  човека  или докладвани  случаи  и експериментални  изследвания  
върху  животни  (напр . токсикокинетични  данни , информация  за 
зависимост  структура -активност , данни  от други  изследвания  за токс­  
ичност ). Оценката  на данните  следва  да включва  обсъждане  както  на 
биологичната , така и на статистическата  значимост . Оценката  следва  
да включва  връзката  (ако има такава ) между  наблюдаваните  невропат­  
ологични  и поведенчески  изменения . Насоки  относно  тълкуването  на 
резултатите  за невротоксичност  за развиващия  се организъм  се 
съдържат  в метод  за изпитване  Б.53 (35) и в Tyl et al., 2008 (31).  
Кохорта  3 (имунотоксичност  за развиващия  се организъм ) 
83. Потискането  или подобряването  на имунната  функция , както  е оценено  
чрез TDAR (зависим  от Т-клетки  отговор  чрез образуване  на антитела ), 
следва  да се оценяват  в контекста  на всички  извършени  наблюдения . 
Значението  на резултатите  от TDAR може  да бъде  подкрепено  от 
други  ефекти  върху  имунологично -свързаните  показатели  (напр . 
клетъчност  на костен  мозък , тегло  и хистопатология  на лимфоидни  
тъкани , разпределение  на подгрупите  на лимфоцитите ). Ефектите , уста­  
новени  чрез TDAR, могат  да бъдат  по-малко  съдържателни  при друга  
токсичност , наблюдавана  при по-ниски  концентрации  на експозиция . 
84. Ръководство  № 43 на ОИСР  следва  да бъде  консултирано  за помощ  
при тълкуването  на резултати  за репродуктивната  токсичност  и неврот­  
оксичност  (26).  
ЛИТЕРАТУРА  
(1) Cooper, R.L., J.C. Lamb, S.M. Barlow, K. Bentley, A.M. Brady, N. Doerr, 
D.L. Eisenbrandt, P.A. Fenner-Crisp, R.N. Hines, L.F.H. Irvine, C.A. Kimmel, H. Koeter, A.A. Li, S.L. Makris, L.P. Sheets, G.J.A. Speijers 
and K.E. Whitby (2006), ‘A Tiered Approach to Life Stages Testing for 
Agricultural Chemical Safety Assessment’,  Critical Reviews in Toxicology , 
36, 69-98.
 
(2) Thigpen, J.E., K.D.R. Setchell, K.B. Ahlmark, J. Locklear, T. Spahr, G.F. 
Leviness, M.F. Goelz, J.K. Haseman, R.R. Newbold, and D.B. Forsythe (1999), ‘Phytoestrogen Content of Purified Open and Closed Formula 
Laboratory Animal Diets’,  Lab. Anim. Sci. , 49, 530-536.
 
(3) Zoetis, T. and I. Walls (2003), Principles and Practices for Direct Dosing 
of Pre-Weaning Mammals in Toxicity Testing and Research, ILSI Press, 
Washington, DC.  
(4) Moser, V.C., I. Walls and T. Zoetis (2005), ‘Direct Dosing of Preweaning 
Rodents in Toxicity Testing and Research: Deliberations of an ILSI RSI 
Expert Working Group’, International Journal of Toxicology, 24, 87-94.  
(5) Conolly, R.B., B.D. Beck, and J.I. Goodman (1999), ‘Stimulating 
Research to Improve the Scientific Basis of Risk Assessment’,  Toxico­
logical Sciences , 49, 1-4.  
(6) Ulbrich, B. and A.K. Palmer (1995), ‘Detection of Effects on Male Repro ­
duction — a Literature Survey’,  Journal of the American College of Toxi ­
cologists , 14, 293-327.  
(7) Mangelsdorf, I., J. Buschmann and B. Orthen (2003), ‘Some Aspects 
Relating to the Evaluation of the Effects of Chemicals on Male Fertility’,  
Regulatory Toxicology and Pharmacology , 37, 356-369.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 883
 
(8) Sakai, T., M. Takahashi, K. Mitsumori, K. Yasuhara, K. Kawashima, H. 
Mayahara and Y. Ohno (2000). ‘Collaborative work to evaluate toxicity on 
male reproductive organs by repeated dose studies in rats — overview of the studies’,  Journal of Toxicological Sciences , 25, 1-21.
 
(9) Creasy, D.M. (2003), ‘Evaluation of Testicular Toxicology: A Synopsis 
and Discussion of the Recommendations Proposed by the Society of Toxi ­
cologic Pathology’,  Birth Defects Research , Part B, 68, 408-415.  
(10) Goldman, J.M., A.S. Murr, A.R. Buckalew, J.M. Ferrell and R.L. Cooper 
(2007), ‘The Rodent Estrous Cycle: Characterization of Vaginal Cytology 
and its Utility in Toxicological Studies’,  Birth Defects Research , Part B, 
80 (2), 84-97.  
(11) Sadleir, R.M.F.S. (1979), ‘Cycles and Seasons’, in C.R. Auston and R.V. 
Short (eds.),  Reproduction in Mammals: I. Germ Cells and Fertilization , 
Cambridge, New York.  
(12) Gallavan, R.H. Jr, J.F. Holson, D.G. Stump, J.F. Knapp and V.L. 
Reynolds (1999), ‘Interpreting the Toxicologic Significance of Alterations 
in Anogenital Distance: Potential for Confounding Effects of Progeny Body Weights’,  Reproductive Toxicology,  13: 383-390.
 
(13) Korenbrot, C.C., I.T. Huhtaniemi and R.I. Weiner (1977), ‘Preputial Sepa ­
ration as an External Sign of Pubertal Development in the Male Rat’,  
Biological Reproduction , 17, 298-303.  
(14) Ladics, G.S. (2007), ‘Use of SRBC Antibody Responses for Immunoto ­
xicity Testing’,  Methods , 41, 9-19.  
(15) Gore, E.R., J. Gower, E. Kurali, J.L. Sui, J. Bynum, D. Ennulat and D.J. 
Herzyk (2004), ‘Primary Antibody Response to Keyhole Limpet Hemo ­
cyanin in Rat as a Model for Immunotoxicity Evaluation’,  Toxicology , 
197, 23-35.  
(16) Gray, L.E., J. Ostby, J. Ferrell, G. Rehnberg, R. Linder, R. Cooper, J. 
Goldman, V. Slott and J. Laskey (1989), ‘A Dose-Response Analysis of Methoxychlor-Induced Alterations of Reproductive Development and 
Function in the Rat’,  Fundamental and Applied Toxicology , 12, 92-108.
 
(17) Robb, G.W., R.P. Amann and G.J. Killian (1978), ‘Daily Sperm 
Production and Epididymal Sperm Reserves of Pubertal and Adult Rats’,  
Journal of Reproduction and Fertility ,54, 103-107.  
(18) Klinefelter, G.R., L.E. Jr Gray and J.D. Suarez (1991), ‘The Method of 
Sperm Collection Significantly Influences Sperm Motion Parameters Following Ethane Dimethanesulfonate Administration in the Rat’.  Repro­
ductive Toxicology ,5, 39-44.
 
(19) Seed, J., R.E. Chapin, E.D. Clegg., L.A. Dostal, R.H. Foote, M.E. Hurtt, 
G.R. Klinefelter, S.L. Makris, S.D. Perreault, S. Schrader, D. Seyler, R. 
Sprando, K.A. Treinen, D.N. Veeramachaneni and L.D. Wise (1996), 
‘Methods for Assessing Sperm Motility, Morphology, and Counts in the Rat, Rabbit, and Dog: a Consensus Report’,  Reproductive Toxicology , 10, 
237- 244.
 
(20) Chapin, R.E., R.S. Filler, D. Gulati, J.J. Heindel, D.F. Katz, C.A. Mebus, 
F. Obasaju, S.D. Perreault, S.R. Russell and S. Schrader (1992), ‘Methods for Assessing Rat Sperm Motility’,  Reproductive Toxicology , 6, 267-273.
 
(21) Klinefelter, G.R., N.L. Roberts and J.D. Suarez (1992), ‘Direct Effects of 
Ethane Dimethanesulphonate on Epididymal Function in Adult Rats: an  In 
Vitro  Demonstration’,  Journal of Andrology , 13, 409-421.  
(22) Slott, V.L., J.D. Suarez and S.D. Perreault (1991), ‘Rat Sperm Motility 
Analysis: Methodologic Considerations’,  Reproductive Toxicology , 5, 449- 
458. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 884
 
(23) Slott, V.L., and S.D. Perreault (1993), ‘Computer-Assisted Sperm Analysis 
of Rodent Epididymal Sperm Motility Using the Hamilton-Thorn Motility 
Analyzer’,  Methods in Toxicology, Part A , Academic, Orlando, Florida. 
pp. 319-333.  
(24) Toth, G.P., J.A. Stober, E.J. Read, H. Zenick and M.K. Smith (1989), ‘The 
Automated Analysis of Rat Sperm Motility Following Subchronic Epich ­
lorhydrin Administration: Methodologic and Statistical Considerations’,  
Journal of Andrology , 10, 401-415.  
(25) Linder, R.E., L.F. Strader, V.L. Slott and J.D. Suarez (1992), ‘Endpoints 
of Spermatoxicity in the Rat After Short Duration Exposures to Fourteen Reproductive Toxicants’,  Reproductive Toxicology , 6, 491-505.
 
(26) OECD (2008),  Guidance Document on Mammalian Reproductive Toxicity 
Testing and Assessment , Series on Testing and Assessment, № 43, ENV/ 
JM/MONO(2008)16, OECD, Paris.  
(27) Working, P.K., M. Hurtt (1987), ‘Computerized Videomicrographic 
Analysis of Rat Sperm Motility’,  Journal of Andrology , 8, 330-337.  
(28) Bolin, B., R. Garman, K. Jensen, G. Krinke, B. Stuart, and an ad Hoc 
Working Group of the STP Scientific and Regulatory Policy Committee (2006), ‘A “Best Practices” Approach to Neuropathologic Assessment in 
Developmental Neurotoxicity Testing — for Today’,  Toxicological 
Pathology , 34, 296-313.
 
(29) Stütz, N., B. Bongiovanni, M. Rassetto, A. Ferri, A.M. Evangelista de 
Duffard, and R. Duffard (2006), ‘Detection of 2,4-dichlorophenoxyacetic 
Acid in Rat Milk of Dams Exposed During Lactation and Milk Analysis of 
their Major Components’,  Food Chemicals Toxicology , 44, 8-16.  
(30) Thigpen, JE, K.D.R. Setchell, J.K. Haseman, H.E. Saunders, G.F. 
Caviness, G.E. Kissling, M.G. Grant and D.B. Forsythe (2007), 
‘Variations in Phytoestrogen Content between Different Mill Dates of the Same Diet Produces Significant Differences in the Time of Vaginal Opening in CD-1 Mice and F344 Rats but not in CD Sprague Dawley 
Rats’,  Environmental health perspectives,  115(12), 1717-1726.
 
(31) Tyl, R.W., K. Crofton, A. Moretto, V. Moser, L.P. Sheets and T.J. 
Sobotka (2008), ‘Identification and Interpretation of Developmental 
Neurotoxicity Effects: a Report from the ILSI Research Foundation/Risk 
Science Institute Expert Working Group on Neurodevelopmental Endpo ­
ints’,  Neurotoxicology and Teratology , 30: 349-381.  
(32) OECD (1996),  Combined Repeated Dose Toxicity Study with the Repro ­
duction/Developmental Toxicity Screening Test , OECD Guideline for 
Testing of Chemicals, № 422, OECD, Paris.  
(33) Глава  Б.43 от настоящото  приложение , Невротоксикологично  
изследване  при гризачи  
(34) OECD (2000),  Guidance Document on the recognition, assessment, and 
use of clinical signs as humane endpoints for experimental animals used in safety evaluations , Series on Testing and Assessment, № 19, ENV/JM/ 
MONO(2000)7, OECD, Paris.
 
(35) Глава  Б.53 от настоящото  приложение , Изследване  за невротокс­  
ичност  за развиващия  се организъм  
(36) Глава  Б.54 от настоящото  приложение , Утеротрофично  биологично  
изследване  при гризачи : Краткосрочно  скринингово  изследване  за 
естрогенни  свойства  
(37) Глава  Б.55 от настоящото  приложение , Биологично  изследване  на 
Hershberger при плъхове : Краткосрочно  скринингово  изследване  за 
(анти )андрогенни  свойства  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 885
 
(38) OECD (2009), Guidance Document for Histologic Evalution of Endocrine 
and Reproductive Test in Rodents, Series on Testing and Assessment, 
№ 106, OECD, Paris.  
(39) OECD (2011), Guidance Document on the Current Implementation of 
Internal Triggers in the Extended One Generation Reproductive Toxicity 
Study in the United States and Canada, Series on Testing and Assessment, 
№ 117, ENV/JM/MONO(2011)21, OECD, Paris.  
(40) OECD (2013), Guidance Document supporting TG 443: Extended One 
Generation Reproductive Toxicity Study, Series on Testing and 
Assessment, № 151, OECD, Paris.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 886
 
Допълнение  1 
Измервания  и наблюдения , включени  в батерията  от функционални  изпитвания  
(Кохорта  2А) 
В клетка  и на открито  Свързани  с манипулиране  Физиологични  
Стойка  Трудност  на изваждане  Температура  
Неволни  клонични  и тонични  
движения  Трудност  на боравене  Телесно  тегло  
Затваряне  на клепачите  Мускулен  тонус  Реакция  на зениците  
Пилоерекция  Отговор  при доближаване  Големина  на зениците  
Слюноотделяне  Отговор  при допир  
Сълзотечение  Слухов  отговор  
Издаване  на звуци  Отговор  при ощипване  на 
опашката  
Изправяне  на задни  крайници  Рефлекс  за връщане  в 
първоначално  положение  
след  обръщане  
Аномалии  в походката  Разстояние  между  лапите  
след  пускане  от 30 cm на 
земята  
Събуждане  Сила  на захват  на предните  
крайници  
Стереотипно  поведение  Сила  на захват  на задните  
крайници  
Необичайно  поведение  
Петна  
Аномалии  в дишането  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 887
 
Допълнение  2 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Химикал : Вещество  или смес . 
Изпитван  химикал : Всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 888
 
Б.57. ИЗСЛЕДВАНЕ  НА СТЕРОИДОГЕНЕЗАТА  В H295R КЛЕТКИ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на насоките  за изпитване  
на ОИСР  (ТG) 456 (2011). През  1998 г. ОИСР  стартира  с висок  
приоритет  дейност  по преразглеждане  на съществуващите  и по 
разработване  на нови  указания  за скрининг  и изпитвания  за потенциално  
нарушаващи  функциите  на ендокринната  система  химикали  (1). Конц­  
ептуалната  рамка  на ОИСР  от 2002 г. за изпитване  и оценка  на 
химикали , нарушаващи  функциите  на ендокринната  система , се състои  
от пет равнища , всяко  от които  съответства  на различно  равнище  на 
биологична  сложност  (1). Изследването  in vitro  на стероидогенезата  в 
H295R клетки  (H295R), описано  в настоящия  метод  за изпитване , при 
което  се използва  клетъчна  линия  от карцином  на кората  на 
надбъбреците  при човека  (NCI-H295R клетки ), представлява  равнище  
2 „изследване  in vitro , предоставящо  механистични  данни “, които  да 
се използват  за целите  на скрининга  и приоритизирането . 
Разработването  и стандартизирането  на изследването  като скринингово  
за ефектите  от химикали  върху  стероидогенезата , по-специално  върху  
производството  на 17β-естрадиол  (E2) и тестостерон  (T), беше  
извършено  като процес , включващ  няколко  стъпки . Изследването  в 
H295R клетки  е оптимизирано  и валидирано  (2)(3)(4)(5).  
2. Целта  на изследването  на стероидогенезата  в H295R клетки  е да се 
открият  химикали , които  въздействат  върху  производството  на E2 и T. 
Изследването  в H295R клетки  цели  да се идентифицират  ксенобиотици , 
имащи  за свое прицелно  място  или места  ендогенните  компоненти , 
които  включват  вътреклетъчния  биохимичен  път, започващ  с последов­  
ателността  от реакции  от холестерола  до производството  на E2 и/или T. 
Изследването  в H295R клетки  не е предназначено  за определяне  на 
химикали , които  засягат  стероидогенезата  поради  въздействие  върху  
хипоталамус -хипофиза -гонадната  ос (ос ХХГ ). Целта  на изследването  е 
да се предостави  отговор  „ДА/НЕ“ по отношение  на потенциала  на 
даден  химикал  да предизвиква  или потиска  производството  на T и E2; 
В някои  случаи  обаче  могат  да бъдат  получени  количествени  резултати  
(вж. параграфи  53 и 54). Резултатите  от изследването  се изразяват  като 
относителни  промени  в производството  на хормони  в сравнение  с 
контролните  проби  на разтворител  (КПР ). Изследването  няма  за цел 
да даде  специфична  механистична  информация  относно  взаимоде­  
йствието  на изпитвания  химикал  с ендокринната  система . Научните  
изследвания  са проведени  с използване  на клетъчна  линия , за да се 
идентифицират  ефектите  върху  специфични  ензими  и хормони  
предшественици  като прогестерон  (2). 
3. Определенията  и съкращенията , използвани  за този метод  за 
изпитване , са описани  в Допълнението . Подробен  протокол , включ­  
ително  инструкции  за начина , по който  трябва  да се приготвят  
разтвори  и клетъчни  култури , и да се извършват  различни  аспекти  на 
изпитването , е на разположение  като допълнение  I-III към документ  на 
ОИСР  „Многолабораторно  валидиране  на изследването  на стероидо­  
генезата  в H295R клетки  за идентифициране  на модулатори  на произ­  
водството  на тестостерон  и естрадиол “ (4).  
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  И ОГРАНИЧЕНИЯ  
4. Пет различни  ензима , катализиращи  шест  различни  реакции , са свързани  с 
биосинтезата  на полови  стероидни  хормони . Превръщането  по ензимен  
път на холестерола  в прегненолон  чрез ензим  (CYP11A), прекъсващ  
страничната  верига  на холестерола , от цитохром  P450 (CYP), представлява  
първата  крачка  в последователност  от биохимични  реакции , които  
завършват  със синтеза  на стероидни  крайни  продукти . В зависимост  от 
порядъка  на следващите  две реакции , стероидогенният  път се разделя  на 
два пътя , Δ 5 -хидроксистероиден  и Δ 4 -кетостероиден , които  се сливат  при 
производството  на андростендион  (фигура  1). 
5. Андростендион  се преобразува  в тестостерон  (T) от 17β-хидрокс­  
истероиддехидрогеназа  (17β-HSD). Тестостеронът  е едновременно  
предшественик  и краен  продукт . В мъжкия  организъм  T може  да се 
преобразува  в дихидротестостерон  (ДХТ ) чрез 5α-редуктаза , която  се 
намира  в клетъчните  мембрани , ядрената  обвивка  и ендоплазматичния  
ретикулум  на прицелните  за андрогенната  активност  тъкани , като 
простатата  и семенните  мехурчета . ДХТ  е значително  по-мощен  
андроген  от T и също  така се счита  за краен  продукт . Изследването  
на стероидогенезата  в H295R клетки  не измерва  ДХТ  (вж. параграф  10). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 889
 
6. Ензимът  в стероидогенния  път, който  превръща  андрогенни  химикали  
в естрогенни  химикали , е ароматаза  (CYP19). CYP19 превръща  T в 
17β-естрадиол  (E2) и андростендиона  в естрон . E2 и T се считат  за 
крайни  продукти  на стероидогенния  път. 
7. Спецификата  на лиазната  активност  на CYP17 е различна  при разл­  
ичните  видове  по отношение  на междинните  субстрати . При човека  
ензимът  благоприятства  субстрати  на Δ 5 -хидроксистероидния  път 
(прегненолон ), докато  при плъховете  се благоприятстват  субстрати  от 
Δ 4 -кетостероидния  път (прогестерон ) (19). Тези  разлики  в лиазната  
активност  на CYP17 могат  да обяснят  някои  различия  при отделните  
видове  в отговора  на химикали , които  променят  стероидогенезата  in 
vivo (6). H295R клетките  са показали , че съответстват  в най-голяма  
степен  на модела  на генната  експресия  чрез ензими  и производството  
на стероиди  в надбъбречната  жлеза  на полово  зрели  хора  (20), но е 
известно , че при тях експресията  е чрез ензими  както  за Δ 4 -хидрокс­  
истероидния , така и за Δ 5 -кетостероидния  път за синтеза  на андрогени  
(7)(11)(13)(15).  
Фигура  1 
Стероидогенен  път в H295R клетки .
 
Забележка : 
Ензимите  са в курсив , хормоните  са с удебелен  шрифт , а стрелките  
указват  посоката  на синтезата . Сивият  фон показва  кортикостероидни  
пътища /продукти . Пътищата /продуктите , свързани  с половите  
стероидни  хормони , са оградени  в кръг . CYP = цитохром  P450; HSD 
= хидроксистероиддехидрогеназа ; DHEA = дехидроепиандростерон . 
8. Моделът  in vitro  с клетъчна  линия  (H295R клетки ) от карцином  на 
кората  на надбъбреците  при човека  е полезен  за изследване  на 
ефектите  върху  синтезата  на стероидни  хормони  (2)(7)(8)(9)(10). 
Клетъчната  линия  H295R експресира  гени , кодиращи  всички  
посочени  по-горе ключови  ензими  за стероидогенезата  (11)(15) 
(Фигура  1). Това  е уникално  свойство , защото  експресията  in vivo  на 
тези гени  е зависима  от тъканите  и етапа  на развитие  на организма , 
като обичайно  една  отделно  взета  тъкан  или етап на развитие  на 
организма  не експресира  всички  гени , участващи  в стероидогенезата  
(2). H295R клетките  притежават  физиологични  характеристики  на 
зонално  недиференцирани  фетални  клетки  от надбъбречната  жлеза  
при човека  (11). Клетките  представляват  система  in vitro , която  е 
уникална  с това, че те могат  да произвеждат  всички  стероидни  
хормони , установени  в кората  на надбъбречната  жлеза  и гонадите  
при полово  зрели  хора , с което  позволяват  изпитване  за ефектите  
както  върху  кортикостероидната  синтеза , така и върху  производството  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 890
 
на полови  стероидни  хормони , като например  андрогени  и естрогени , 
въпреки  че изследването  е валидирано  само  за откриване  на T и E2. 
Измененията , записани  от системата  за изпитване  под формата  на 
промяна  в производството  на T и E2, могат  да бъдат  в резултат  от 
множество  различни  взаимодействия  на изпитваните  химикали  със 
стероидогенни  функции , които  се експресират  от H295R клетките . Те 
включват  модулация  на експресията , синтезата  или функцията  на 
ензими , участващи  в производството , преобразуването  или 
елиминирането  на стероидни  хормони  (12)(13)(14). Потискането  на 
производството  на хормони  може  да се дължи  на пряко  конкурентно  
свързване  с ензим  от метаболитния  път, на въздействие  върху  
кофактори  като НАДФ  (никотинамидадениндинуклеотидфосфат ) и 
цАМФ  (цикличен  аденозинмонофосфат ), и/или на увеличение  на 
стероидния  метаболизъм  или потискане  на генната  експресия  по 
отношение  на някои  ензими  в стероидогенния  път. Докато  потискането  
може  да бъде  функция  както  на преки , така и на косвени  процеси , 
свързани  с производството  на хормони , индуцирането  обикновено  
има непряк  характер , като например  чрез въздействие  върху  
кофактори  като НАДФ  и цАМФ  (както  при форсколин ), намаляване  
на стероидния  метаболизъм  (13), и/или положително  регулиране  на 
генната  експресия  при стероидогенезата . 
9. Изследването  на стероидогенезата  в H295R клетки  има няколко  
предимства : 
— Дава  възможност  за откриване  както  на увеличения , така и на 
намаления  в производството  както  на T, така и на E2; 
— Позволява  пряка  оценка  на потенциалното  въздействие  на 
химикалите  върху  клетъчната  жизнеспособност /цитотоксичността . 
Това  е важна  характеристика , тъй като позволява  различаване  на 
ефектите , които  се дължат  на цитотоксичността , от дължащите  се 
на прякото  взаимодействие  между  химикали  и стероидогенни  
пътища , което  не е възможно  в системи  от тъканни  експланти , 
които  се състоят  от множество  видове  клетки  с различни  степени  
на чувствителност  и функционалност ; 
— То не изисква  използването  на животни ; 
— Клетъчна  линия  H295R се предлага  в търговската  мрежа . 
10. Основните  ограничения  на изследването  са, както  следва : 
— Неговият  метаболитен  капацитет  е неизвестен , но вероятно  доста  
ограничен ; следователно  химикали , които  е необходимо  да бъдат  
метаболитно  активирани , вероятно  ще бъдат  пропуснати  при това 
изследване . 
— Тъй като произхожда  от тъкан  на надбъбречната  жлеза , H295R 
притежава  ензимите , способни  да произвеждат  глюкокортикоиди  
и минералкортикоиди , както  и полови  хормони ; поради  това 
ефектите  върху  производството  на глюкокортикоиди  и минерал­  
кортикоиди  биха  могли  да окажат  въздействие  върху  равнищата  
на T и E2, наблюдавани  при изследването . 
— То не измерва  ДХТ  и поради  това от него  не се очаква  да открива  
химикали , които  потискат  5α-редуктаза , като в последния  случай  
може  да бъде  използвано  изследване  на Hershberger (16).  
— Изследването  на стероидогенезата  в H295R клетки  не открива  
химикали , които  пречат  на стероидогенезата  чрез оказване  на 
въздействие  върху  хипоталамус -хипофиза -гонадната  ос (ос ХХГ ), 
тъй като това може  да бъде  изследвано  само  при невредими  
животни . 
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
11. Целта  на това изследване  е откриването  на химикали , които  възде­  
йстват  върху  производството  на T и E2. Също  така T е предшественик  
в пътя , водещ  до производството  на E2. Изследването  може  да открива  
химикали , които  обикновено  потискат  или индуцират  ензимите  от 
стероидогенния  път. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 891
 
12. Изпитването  обикновено  се провежда  при стандартни  условия  за 
клетъчни  култури  в 24-гнездови  плаки . Като  алтернатива , за 
изследването  могат  да бъдат  използвани  плаки  с други  размери ; 
Въпреки  това, посяването  и условията  на опита  следва  да бъдат  
съответно  коригирани , за да се поддържа  спазването  на критериите  
за параметрите . 
13. След  период  на аклиматизация  от 24 часа в многогнездови  плаки , 
клетките  се експонират  за 48 часа на седем  концентрации  от 
изпитвания  химикал  в най-малко  три повторения . Независимо  се 
провежда  изпитване  с разтворител  и познат  инхибитор  и индуктор  на 
производството  на хормони  при определена  концентрация , като отриц­  
ателни  и положителни  контроли . В края  на периода  на експозиция  
средата  се отстранява  от всяко  гнездо . Жизнеспособността  на 
клетките  във всяко  гнездо  се анализира  незабавно  след  отстраняването  
на средата . Концентрациите  на хормони  в средата  могат  да бъдат  
измерени  с помощта  на различни  методи , включително  предлагани  в 
търговската  мрежа  комплекти  за измерване  на хормони  и/или 
инструментални  техники , като например  течна  хроматография /массп­  
ектрометрия  (LC-МS). Данните  са изразени  като кратно  на 
изменението  по отношение  на контролата  на разтворител  и най- 
ниската  концентрация , при която  се наблюдава  ефект  (LOEC). Ако 
резултатът  от изпитването  е отрицателен , най-високата  изпитвана  
концентрация  се докладва  като концентрация  без наблюдавано  
въздействие  (NOEC). Заключенията  относно  способността  на даден  
химикал  да засегне  стероидогенезата  следва  да се основават  на най- 
малко  две независими  провеждания  на изпитването . Първото  
независимо  провеждане  на изпитването  може  да функционира  като 
независимо  провеждане  за определяне  на обхвата  с последващи  
корекции  на концентрациите  за независими  провеждания  2 и 3, ако е 
приложимо , ако бъдат  срещнати  затруднения  по отношение  на разт­  
воримостта  или цитотоксичността , или ако изглежда , че активността  на 
химикала  е в края  на изпитвания  обхват  от концентрации . 
ПРОЦЕДУРА  ОТНОСНО  КУЛТУРИТЕ  
Клетъчна  линия  
14. NCI-H295R клетките  са достъпни  в търговската  мрежа  от American 
Type Culture Collections (ATCC) след  подписване  на Споразумение  за 
трансфер  на материал  (МTA) (  1 ). 
Въведение  
15. Поради  промени  в капацитета  за производство  на E2 с увеличаване  на 
възрастта /броя  пасажи  (2) клетките  следва  да бъдат  култивирани  по 
специален  протокол  преди  да бъдат  използвани , и следва  да бъдат  
отбелязани  броят  на пасажите  от размразяването  на клетките , както  и 
номерът  на пасажа , при който  клетките  са били  замразени  и поставени  
на съхранение  в течен  азот. Първото  число  указва  текущия  номер  на 
пасажа , а второто  число  описва  номера  на пасажа , при който  клетките  
са били  замразени  и поставени  на съхранение . Например  клетките , 
които  са били  замразени  след  петия  пасаж  и размразени , и след  това 
са преминали  през три разделяния  (4 пасажа , като прясно  размразените  
клетки  се броят  за пасаж  номер  1), след  като са били  култивирани  
отново , следва  да бъдат  обозначени  като пасаж  4.5. Пример  за схема  
за номериране  е показан  в Допълнение  I към доклада  за валидирането  
(4). 
16. Като  основа  за средата  с добавки  и средата  за замразяване  се използва  
изходна  среда . Средата  с добавки  е необходим  компонент  при 
култивирането  на клетки . Средата  за замразяване  е специално  
проектирана  така, че да позволява  замразяване  на клетки  за продълж­  
ително  съхранение  без да се оказва  въздействие  върху  тях. Преди  
употреба , Nu-Serum ( или подобен  серум  с еднакви  свойства , за който  
е доказано , че дава данни , които  отговарят  на изискванията  за парам­  
етрите  на изпитването  и за контрол  на качеството  (КК)), който  е 
съставка  на средата  с добавки , трябва  да се анализира  за фонови  
концентрации  на T и E2. Изготвянето  на тези разтвори  е описано  в 
Допълнение  II към доклада  за валидирането  (4). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 892  
( 1 ) ATCC CRL-2128; ATCC, Мanassas, VA, USA, [http://www.lgcstandards-atcc.org/].
 17. След  иницииране  на H295R клетъчна  култура  от оригинална  партида  
от ATCC, клетките  трябва  да бъдат  отглеждани  в продължение  на пет 
пасажа  (т.е. клетките  са разделяни  4 пъти ). След  това клетките  от 
петия  пасаж  се замразяват  в течен  азот за съхранение . Преди  
замразяване  на клетките , с проба  от клетки  от предходния  четвърти  
пасаж  независимо  се провежда  изпитване  в плака  за КК (виж 
параграфи  36 и 37), за да се провери  дали  основното  производство  
на хормони  и отговорът  на химикали  от положителната  контрола  
съответства  на критериите  за контрол  на качеството  на изследването , 
определени  в Таблица  5. 
18. H295R клетките  трябва  да бъдат  култивирани , замразени  и 
съхранявани  в течен  азот, за да се гарантира , че винаги  има на разп­  
оложение  клетки  от подходящ  пасаж /възраст  за култивиране  и 
използване . Максималният  брой  пасажи  след  започването  на 
култивирането  на партида  нови  ( 1 ) или замразени  ( 2 ) клетки , които  са 
допустими  за употреба  в изследването  на стероидогенезата  в H295R 
клетки , не трябва  да превишава  10. Например , допустими  пасажи  за 
култури  от клетки  от партида , замразена  при пасаж  5, биха  били  
пасажи  от 4.5 до 10.5. За клетките , чието  култивиране  е започнало  
от тези замразени  партиди , трябва  да бъде  следвана  процедурата , 
описана  в параграф  19. Тези  клетки  следва  да бъдат  култивирани  в 
продължение  на най-малко  четири  (4) допълнителни  пасажа  (пасаж  
4.5) преди  да бъдат  използвани  при изпитването . 
Започване  на култивирането  на клетки  от замразените  количества  
19. Процедурата  за започване  на култивирането  на клетки  от замразените  
количества  следва  да бъде  използвана , когато  нова  партида  на клетките  
се изважда  от съхранение  в течен  азот с цел култивиране  и изпитване . 
Подробности  за тази процедура  са дадени  в Допълнение  III от доклада  
за валидирането  (4). Клетките  се изваждат  от съхранението  в течен  
азот, бързо  се размразяват  и се поставят  в среда  с добавки  в 
центрофужна  епруветка , центрофугират  се при стайна  температура , 
ресуспендират  се в среда  с добавки  и се прехвърлят  в колба  за 
клетъчни  култури . Средата  трябва  да бъде  сменена  на следващия  
ден. H295R клетките  се култивират  в инкубатор  при 37 °C с 5 % 
CO 2 във въздушна  атмосфера  и средата  се подновява  2-3 пъти  
седмично . Когато  настъпи  приблизително  85—90 % сливане  на 
клетките , те следва  да бъдат  разделени . Разделянето  на клетките  е 
необходимо , за да се осигури  здравето  и растежа  на клетките  и да се 
поддържат  клетки  за извършване  на биологични  изследвания . Клетките  
се промиват  три пъти  с фосфатно  буфериран  физиологичен  разтвор  
(PBS, без Ca  2+ и Мg 2+ ) и се отделят  от колбата  за клетъчни  култури  
чрез добавяне  на подходящ  ензим  за отделяне , напр . трипсин , в PBS 
(без Ca  2+ и Мg 2+ ). Непосредствено  след  като клетките  бъдат  отделени  
от колбата  за клетъчни  култури , действието  на ензима  следва  да бъде  
прекратено  с прибавяне  на среда  с добавки  при съотношение  от 3X от 
обема , използван  за третиране  с ензима . Клетките  се поставят  в 
центрофужна  епруветка , центрофугират  се при стайна  температура , 
надутаечната  течност  се отстранява  и клетъчната  утайка  се ресус­  
пендира  в среда  с добавки . Подходящият  обем  клетъчен  разтвор  се 
поставя  в новата  колба  за клетъчни  култури . Обемът  на клетъчния  
разтвор  следва  да се приспособи  така, че клетките  да достигнат  
сливане  в рамките  на 5—7 дни. Препоръчителното  съотношение  на 
субкултивиране  е от 1:3 до 1:4. Плаката  следва  да бъде  внимателно  
етикетирана . Клетките  са вече готови  за използване  при изследването  и 
излишните  клетки  следва  да бъдат  замразени  в течен  азот, както  е 
описано  в параграф  20. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 893  
( 1 ) „Нова  партида “ се отнася  за нова  партида  от клетки , получени  от АТСС . 
( 2 ) „Замразена  партида “ се отнася  до клетки , които  са били  предварително  
култивирани  и впоследствие  замразени  в лаборатория , различна  от АТСС .
 Замразяване  на H295R клетки  (подготовка  на клетки  за 
съхраняване  в течен  азот ) 
20. За подготовка  на H295R клетките  за замразяване  трябва  да бъде  
следвана  описаната  по-горе процедура  за разделяне  на клетките  до 
стъпката  по ресуспендиране  на клетъчната  утайка , образувана  на 
дъното  на центрофужната  епруветка . На този етап клетъчната  утайка  
се ресуспендира  в среда  за замразяване . Разтворът  се прехвърля  в 
подходящо  етикетирана  криоепруветка  и се замразява  при температура  
– 80 °C за 24 часа, след  което  криоепруветката  се прехвърля  в течен  
азот за съхранение . Подробности  за тази процедура  са дадени  в 
допълнение  III от доклада  за валидирането  (4). 
Поставяне  в плаки  и предварителна  инкубация  на клетки  за 
изпитването  
21. Броят  на 24-гнездовите  плаки , приготвени  както  е посочено  в параграф  
19, които  ще бъдат  необходими , зависи  от броя  на химикалите , които  
ще бъдат  изпитвани , и от сливането  на клетките  в блюдата  с 
културите . Като  общо  правило , една  колба  за клетъчни  култури  
(75 cm  2 ) с 80—90 % достигнали  сливане  клетки  осигурява  достатъчно  
клетки  за една  до 1,5 (24- гнездова ) плака  при целева  плътност  от 
200 000 до 300 000 клетки /ml от среда , водеща  до сливане  приблиз­  
ително  50—60 % в гнездата  след  24 часа (фигура  2). Това  обичайно  е 
оптималната  плътност  на клетките  за производство  на хормони  при 
изследването . При по-висока  плътност  моделите  на производство  на 
T, както  и на E2, се променят . Препоръчва  се, преди  провеждането  
на изследване  за първи  път, да бъдат  изпитани  различни  посевни  
плътности  — между  200 000 и 300 000 клетки /ml — и за последващи  
изпитвания  да бъде  избрана  плътността , водеща  до 50—60 % сливане  
след  24 часа в гнездото . 
Фигура  2 
Микрофотография  на H295R клетки  при плътност  на посяване  от 50 % в 
24-гнездова  плака  за клетъчни  култури  след  24 часа , направена  на ръба  на 
гнездото  (А) и в центъра  му (Б)
 
22. Средата  се отстранява  от колбата  за клетъчни  култури  с пипета  и 
клетките  се промиват  3 пъти  със стерилен  PBS (без Ca  2+ и Мg 2+ ). 
Добавя  се ензимен  разтвор  (в PBS) за отделяне  на клетките  от 
колбата  за клетъчни  култури . След  даване  на достатъчно  време  за 
отделяне  на клетките  действието  на ензима  следва  да бъде  прекратено  
с прибавяне  на среда  с добавки  при съотношение  от 3× обема , ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 894
 
използван  за третиране  с ензима . Клетките  се поставят  в центрофужна  
епруветка , центрофугират  се при стайна  температура , надутаечната  
течност  се отстранява  и клетъчната  утайка  се ресуспендира  в среда  с 
добавки . Плътността  на клетките  се изчислява , като се използва  
например  хемоцитометър  или клетъчен  брояч . Разтворът  с клетките  
следва  да се разреди  до желаната  плътност  в гнездата  и щателно  да 
се разбърка , за да се осигури  хомогенна  плътност  на клетките . 
Клетките  следва  да бъдат  поставени  в гнездата  с 1 ml от разтвор  с 
клетки  във всяко  гнездо , и плаките  и гнездата  следва  да бъдат  
етикетирани . Плаките  с поставените  разтвори  с клетки  се инкубират  
при температура  37 °С при 5 % CO  2 във въздушна  атмосферата  в 
продължение  на 24 часа, за да се даде  възможност  на клетките  да се 
прикрепят  към гнездата . 
ИЗИСКВАНИЯ  ЗА КОНТРОЛ  НА КАЧЕСТВОТО  
23. Изключително  важно  е по време  на дозирането  в гнездата  да бъдат  
поставени  точни  обеми  от разтвори  и проби , тъй като тези обеми  
определят  концентрациите , използвани  в изчисленията  на резултатите  
от изследването . 
24. Преди  иницииране  на клетъчната  култура  и всякакво  последващо  
изпитване  всяка  лаборатория  трябва  да докаже  чувствителността  на 
своята  система  за измерване  на хормони  (параграфи  29—31).  
25. Ако трябва  да се извършват  изследвания  с измерване  на хормони  на 
основата  на антитела , химикалите , които  ще бъдат  изпитвани , следва  
преди  започване  на изпитанието  да се анализират  за техния  потенциал  
да пречат  на системата  за измерване , използвана  за количествено  
определяне  на T и E2, както  е посочено  в параграф  32. 
26. Като  разтворител  за изследването  се препоръчва  диметилсулфоксид  
(DМSO). Ако се използва  алтернативен  разтворител , трябва  да се 
определи  следното : 
— Разтворимостта  на изпитвания  химикал , на форсколин  и на 
прохлораз  в разтворителя ; както  и 
— Цитотоксичността  като функция  от концентрацията  на разт­  
ворителя . 
Препоръчва  се максимално  допустимата  концентрация  на разтворителя  
да не превишава  10× разреждане  на най-ниската  концентрация  на разт­  
ворителя , при която  се появява  цитотоксичност . 
27. Преди  провеждане  на изпитването  за първи  път, лабораторията  следва  
да проведе  опит  за определяне  дали  отговаря  на условията , доказващ , 
че е в състояние  да поддържа  и постигне  подходящи  условия  за 
клетъчните  култури  и условия  на изпитването , изисквани  за 
изпитване  на химикала , както  е описано  в параграфи  33—35.  
28. При започване  на изпитване  с използване  на нова  партида , преди  да се 
използва  новата  партида  от клетки , независимо  се провежда  изпитване  
в контролна  плака , за да се направи  оценка  на параметрите  на 
клетките , както  е описано  в параграфи  36 и 37. 
Параметри  на системата  за измерване  на хормони  
Чувствителност  на метода , точност , прецизност  и кръстосана  
реактивност  с матричната  проба  
29. За анализа  на производството  на T и E2 от H295R клетки  всяка  
лаборатория  може  да използва  система  за измерване  на хормони  по 
свой  избор , при условие  че тази система  отговаря  на критериите  за 
параметрите , включително  границата  на количествено  
определяне  (LOQ). Номинално  те са 100 pg/ml за T и 10 pg/ml за E2 
и се основават  на основните  хормонални  равнища , наблюдавани  при 
изследванията  за валидиране . Въпреки  това могат  да бъдат  подходящи  
по-високи  или по-ниски  равнища , в зависимост  от базисните  
хормонални  равнища , достигнати  в изпитващата  лаборатория . Преди  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 895
 
инициирането  на плаката  за КК и независимите  провеждания  на 
изпитването , лабораторията  следва  да докаже , че с изследването  за 
хормони , което  ще се използва , концентрациите  в средата  с добавки  
могат  да бъдат  измерени  с достатъчна  точност  и прецизност , за да 
отговорят  на критериите  за КК, посочени  в таблици  1 и 5, като 
анализира  белязана  проба  от среда  с добавки  с вътрешна  контрола  с 
хормон  като внесена  добавка . Пробата  със средата  с добавки  следва  да 
бъде  белязана  с прибавяне  на най-малко  три концентрации  за всеки  
хормон  (напр . 100, 500, и 2 500 pg/ml от T; 10, 50 и 250 pg/ml от E2; 
или възможно  най-ниските  концентрации , които  се основават  на 
границите  на откриване  на избраната  система  за измерване  на 
хормони  могат  да се използват  за най-ниските  концентрации  на 
внесена  добавка  за T и E2) и тази среда  с добавки  следва  да бъде  
анализирана . Измерените  концентрации  на хормони  в неизвлечени  
проби  трябва  да бъдат  в рамките  на 30 % от номиналните  конце­  
нтрации  и колебанията  при повторните  измервания  на една  и съща  
проба  не трябва  да надвишават  25 % (вж. също  таблица  8 за допълн­  
ителни  критерии  за КК). Ако тези критерии  за КК са изпълнени , 
приема  се, че избраното  изследване  за измерване  на хормони  е дост­  
атъчно  точно  и прецизно  и при него  не се наблюдава  кръстосана  
реактивност  с компонентите  от средата  (матрична  проба ), в резултат  
на която  би могло  да се очаква  значително  влияние  върху  резултата  от 
изследването . В този случай  не се изисква  извличане  на проби  преди  
измерването  на хормони . 
30. В случай  че критериите  за КК в таблици  1 и 8 не са изпълнени , може  
да е налице  значителен  матричен  ефект  и следва  да се извърши  опит  с 
извлечена  белязана  проба  от среда . Пример  за схема  за извличане  е 
описан  в допълнение  II към доклада  за валидирането  (4). Измерванията  
на концентрациите  на хормони  в извлечените  проби  трябва  да бъдат  
направени  трикратно . ( 1 ) Ако може  да се докаже , че след  извличането  
компонентите  на средата  не пречат  на метода  за откриване  на хормон , 
както  е определено  от критериите  за КК, всички  по-нататъшни  опити  
следва  да се извършват  с използване  на извлечени  проби . Ако 
критериите  за КК не могат  да бъдат  изпълнени  след  извличането , 
използваната  система  за измерване  на хормони  не е подходяща  за 
целта  на изследването  на стероидогенезата  в H295R клетки , и следва  
да бъде  използван  алтернативен  метод  за откриване  на хормони . 
Стандартна  крива  
31. Хормоналните  концентрации  в контролните  проби  на разтворител  (SC) 
следва  да бъдат  в линейната  част на стандартната  крива . За предп­  
очитане  е стойностите  на SC да са близо  до центъра  на линейната  
част, за да се гарантира , че индуцирането /потискането  на синтезата  
на хормони  може  да бъде  измерено . Разрежданията  на средата  (или 
екстрактите ) за измерване  трябва  да бъдат  съответно  избрани . 
Линейната  зависимост  следва  да се определя  чрез подходящ  статист­  
ически  подход . 
Изпитване  за пречене  на химикала  
32. Ако трябва  да се извършват  изследвания  с измерване  на хормони  на 
основата  на антитела , като ензимно -свързани  имуносорбентни  
анализи  (ELISA) и радиоимунни  изследвания  (RIA), всеки  химикал  
следва , преди  започване  на действителното  изпитване  на химикалите , 
да се анализира  за потенциал  да пречи  на системата  за измерване  на 
хормони  (Допълнение  III от доклада  за валидирането  (4)), защото  
някои  химикали  могат  да пречат  на тези изпитвания  (17). Ако се 
наблюдава  пречене  ≥ 20 % от основното  производство  на хормони  за 
T и/или E2, както  е определено  от анализа  на хормони , върху  всички  
разреждания  на изходния  разтвор  на изпитвания  химикал  независимо  
се провежда  изпитването  за влияние  на химикали  върху  изследването  
за хормони  (като описаното  в раздел  5.0 от Допълнение  III към 
доклада  за валидирането  (4)) за определяне  на праговата  доза, при 
която  се наблюдава  значително  пречене  (≥ 20 %). Ако влиянието  е 
по-малко  от 30 %, резултатите  могат  да бъдат  коригирани  с влиянието . 
Ако преченето  превишава  30 %, данните  са невалидни  и данните  при ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 896  
( 1 ) Забележка : Ако се изисква  извличане , за всяко  извличане  се извършват  три 
повторения  на измерванията . Всяка  проба  се извлича  само  веднъж .
 тези концентрации  трябва  да се игнорират . Ако значително  пречене  на 
даден  изпитван  химикал  върху  системата  за измерване  на хормони  се 
наблюдава  при повече  от една  концентрация , която  не е цитотоксична , 
следва  да се използва  различна  система  за измерване  на хормони . С 
цел да се избегнат  пречения  от замърсяване  с химикали  се препоръчва  
хормоните  да се извличат  от средата , като се използва  подходящ  разт­  
ворител  — възможни  методи  могат  да бъдат  намерени  в доклада  за 
валидирането  (4). 
Таблица  1 
Критерии  за параметрите  за системата  за измерване  на хормони  
Параметър  Критерий  
Чувствителност  на метода  за 
измерване  Граница  на количествено  
определяне  (LOQ) 
T: 100 pg/ml; E2: 10 pg/ml (  a ) 
Ефикасност  на извличане  на 
хормоните  (само  когато  е необ­  
ходимо  извличане ) Средният  процент  на аналитичен  
добив  (въз основа  на трикратно  
повторение  на измерването ) за 
внесените  добавки  от хормони  
следва  да не се отклонява  с 
повече  от 30 % от внесеното  
количество . 
Пречене  на химикала  (само  
системи  за измерване  на 
основата  на антитела ) Не следва  да се наблюдава  
съществена  кръстосана  
реактивност  с някой  от хормоните , 
произвеждани  от клетките  (≥ 30 % 
от основното  производство  на 
хормони  за съответния  
хормон ) ( b ) ( c ) 
( a ) Бележка : Граничните  стойности  на измерване  за дадения  метод  се основават  
на стойностите  на основното  производство  на хормони , дадени  в таблица  5, 
и са основани  на параметрите . Ако може  да се постигне  по-голямо  основно  
производство  на хормони , границата  може  да бъде  по-голяма . 
( b ) При някои  антитела  на T и E2 може  да се наблюдава  по-голям  процент  на 
кръстосана  реактивност , съответно  с андростендион  и естрон . В такива  
случаи  е невъзможно  да се определят  точно  ефектите  върху  17β-HSD. 
Въпреки  това данните  могат  все пак да предоставят  полезна  информация  
относно  ефектите  върху  производството  на естрогени  или андрогени  като 
цяло . В такива  случаи  данните  следва  да бъдат  изразени  като андрогенни / 
естрогенни  отговори , а не като E2 и T. 
( c ) Те включват : холестерол , прегненолон , прогестерон , 11-деоксикортик­  
остерон , кортикостерон , алдостерон , 17α-прегненолон , 17α-прогестерон , 
деоксикортизол , кортизол , дехидроепиандростерон  (DHEA), андростендион , 
естрон . 
Изпитване  за пригодност  на лабораторията  
33. Преди  изпитването  на неизвестни  химикали , лабораторията  трябва  да 
докаже , че е в състояние  да постигне  и поддържа  подходящи  условия  
за клетъчните  култури  и условия  на изпитването , изисквани  за 
успешното  провеждане  на изследването , чрез независимо  провеждане  
на изпитването  за пригодност  на лабораторията . Тъй като 
извършването  на дадено  изследване  е пряко  свързано  с персонала  на 
лабораторията , извършващ  изследването , тези процедури  следва  да 
бъдат  частично  повтаряни , ако настъпи  промяна  в персонала  на 
лабораторията . 
34. Това  изпитване  за пригодност  се провежда  при същите  условия , 
изброени  в параграфи  38—40, чрез експозиция  на клетки  на 7 
нарастващи  концентрации  на силни , умерено  силни  и слаби  
индуктори  и инхибитори , както  и на отрицателен  химикал  (вж. 
таблица  2). По-конкретно , химикалите , които  ще бъдат  изпитвани , 
включват  силния  индуктор  форсколин  (CAS № 66575-29-9); силния  
инхибитор  прохлораз  (CAS № 67747-09-5); умерено  силния  индуктор  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 897
 
атразин  (CAS № 1912-24-9); умерено  силния  инхибитор  аминогл­  
утетимид  (CAS № 125-84-8); слабия  индуктор  (производство  на E2) и 
слабия  инхибитор  (производство  на T) бисфенол  А (CAS № 80-05-7); и 
отрицателния  химикал  човешки  хорионен  гонадотропин  (HCG) (CAS 
№ 9002-61-3), както  е показано  в таблица  2. Независимо  се провеждат  
изпитвания  с отделни  плаки  за всички  химикали , като за целта  се 
използва  форматът , показан  в таблица  6. Една  плака  за КК (таблица  
4, параграфи  36—37) следва  да бъде  включена  във всяко  ежедневно  
независимо  провеждане  на изпитване  с химикалите  за изпитването  за 
пригодност . 
Таблица  2 
Химикали  за изпитването  за пригодност  и концентрации  на 
експозиция  
Химикал  за изпитването  за 
пригодност  Концентрации  на изпитване  [μΜ] 
Прохлораз  0 (  а ), 0,01, 0,03, 0,1, 0,3, 1, 3, 10 
Форсколин  0 (  а ), 0,03, 0,1, 0,3, 1, 3, 10, 30 
Атразин  0 (  а ), 0,03, 0,1, 1, 3, 10, 30, 100 
Аминоглутетимид  0 (  а ), 0,03, 0,1, 1, 3, 10, 30, 100 
Бисфенол  A 0 (  а ), 0,03, 0,1, 1, 3, 10, 30, 100 
HCG 0 (  а ), 0,03, 0,1, 1, 3, 10, 30, 100  
( а ) Контрола  на разтворител  (DМSO) (0), 1 μl DМSO/гнездо  
Експозицията  на H295R на химикали  за изпитването  за пригодност  
следва  да се извърши  в 24-гнездови  плаки  по време  на изпитването  
за пригодност  на лабораторията . Дозирането  е в μΜ, за всички  дози  на 
изпитвания  химикал . Дозите  следва  да бъдат  прилагани  в DМSO при 
0,1 % v/v на гнездо . Изпитването  за всички  изпитвани  концентрации  
следва  да бъде  провеждано  трикратно  (таблица  6). Независимо  се 
провеждат  изпитвания  с отделни  плаки  за всеки  химикал . Една  плака  
за КК се включва  във всяко  ежедневно  независимо  провеждане  на 
изпитване . 
35. Анализите  на жизнеспособността  на клетките  и на хормоните  следва  да 
се извършват  както  е предвидено  в параграфи  42 до 46. Праговата  
стойност  (най-ниската  концентрация , при която  се наблюдава  ефект , 
LOEC) и решението  за класифициране  следва  да бъдат  докладвани  и 
сравнени  със стойностите  в таблица  3. Данните  се считат  за 
приемливи , ако отговарят  на LOEC и решенията  за класифициране  в 
таблица  3. 
Таблица  3 
Прагови  стойности  (LOEC) и решения  за класифициране  за химикалите  за 
изпитването  за пригодност  
CAS № LOEC [μм] Решение  за класифициране  
T E2 T E2  
Прохлораз  67747-09-5 ≤ 0.1 ≤ 1.0 + (  a ) (Пот­  
искане ) + (Потискане ) 
Форсколин  66575-29-9 ≤ 10 ≤ 0.1 + ( Индукция ) + ( Индукция ) 
Атразин  1912-24-9 ≤ 100 ≤ 10 + ( Индукция ) + ( Индукция ) 
Аминоглут­  
етимид  125-84-8 ≤ 100 ≤ 100 + ( Потискане ) + (Потискане ) ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 898
 
CAS № LOEC [μм] Решение  за класифициране  
T E2 T E2  
Бисфенол  A 80-05-7 ≤ 10 ≤ 10 + ( Потискане ) + (Индукция ) 
HCG 9002-61-3 не е 
прило­  
жимо  не е 
прило­  
жимо  Отрицателен  Отрицателен  
( а ) +, положителен  
не е приложимо : не е приложимо , тъй като не следва  да настъпват  изменения  след  експозиция  на 
концентрации  на отрицателен  контрол , които  не са цитотоксични . 
Плака  за контрол  на качеството  
36. Плаката  за контрол  на качеството  (КК) се използва  за проверка  на 
параметрите  на H295R клетките  при стандартни  условия  за отглеждане  
на културата  и за създаване  на база данни  от предходни  изследвания  за 
концентрации  на хормони  в контроли  на разтворител , положителни  и 
отрицателни  контроли , както  и други  мерки  за КК във времето . 
— Параметрите  на H295R клетките  следва  да се оценяват  с използване  
на плака  за КК за всяка  нова  партида  от ATCC или след  
използването  на предварително  замразени  количества  клетки  за 
първи  път, освен  ако независимото  провеждане  на изпитването  за 
пригодност  на лабораторията  (параграфи  32—34) е било  с тази 
партида  клетки . 
— Плаката  за КК осигурява  цялостна  оценка  на условията  на 
изследването  (напр . клетъчна  жизнеспособност , контроли  на разт­  
ворител , положителни  и отрицателни  контроли , както  и вариране  в 
рамките  на дадено  изследване  и между  различните  изследвания ) 
при изпитване  на химикали  и следва  да бъде  част от всяко  
независимо  провеждане  на изпитването . 
37. Изпитването  за КК се извършва  в 24-гнездова  плака  и следва  същите  
процедури  за инкубация , дозиране , клетъчна  жизнеспособност /цит­  
отоксичност , извличане  на хормони  и анализ  на хормони , описани  в 
параграфи  38—46 за изпитването  на химикали . Плаката  за КК съдържа  
празни  проби , контролни  проби  на разтворител  и две концентрации  на 
известен  индуктор  (форсколин , 10, 1 μМ) и инхибитор  (прохлораз , 0,1, 
1 μм) на синтезата  на E2 и T. В допълнение , в избрани  гнезда  се 
използва  MeOH като положителна  контрола  за изследването  за жизнес­  
пособност /цитотоксичност . Подробно  описание  на структурата  на 
плаката  е представено  в таблица  4. Критериите , на които  трябва  да 
отговаря  плаката  за КК, са изброени  в таблица  5. Изискването  за 
минимално  основно  производство  на хормони  за T и Е2 следва  да 
бъде  изпълнено  както  за гнездата  с контролните  проби  на разтворител , 
така и в тези с празните  проби . 
Таблица  4 
Структура  на плаката  за контрол  на качеството  за изпитване  на параметрите  на 
неекспонирани  H295R клетки  и H295R клетки , експонирани  на известни  
инхибитори  (PRO = прохлораз ) и стимулатори  (FOR = форсколин ) на 
производството  наE2 и T. След  прекратяването  на опита  с експозицията  и 
отстраняването  на средата  се добавя  70 % разтвор  на метанол  към всички  гнезда  
с MeOH, за да служи  като  положителна  контрола  за цитотоксичност  (вж. 
изследването  за цитотоксичност  в допълнение  III към доклада  за валидирането  (4) 
1 2 3 4 5 6  
A Празна  
проба  ( a ) Празна  
проба  ( а ) Празна  
проба  ( а ) Празна  
проба  ( а ) 
(+ MeOH) (  b ) Празна  
проба  ( а ) 
(+ MeOH) (  b ) Празна  
проба  ( а ) 
(+ MeOH) (  b ) 
B DMSO (  c ) 
1 μl DMSO (  c ) 
1 μl DMSO (  c ) 
1 μl DMSO (  c ) 
1 μl 
(+ MeOH) (  b ) DMSO (  c ) 
1 μl 
(+ MeOH) (  b ) DMSO (  c ) 
1 μl 
(+ MeOH) (  b ) ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 899
 
1 2 3 4 5 6  
C FOR 1 μм FOR 1 μм FOR 1 μм PRO 0,1 μм PRO 0,1 μм PRO 0,1 μм 
D FOR 10 
μм FOR 10 
μм FOR 10 
μм PRO 1 μм PRO 1 μм PRO 1 μм 
( а ) Клетките  в гнездата  с празни  проби  получават  само  среда  (т.е. без разтворител ). 
( b ) Добавя  се метанол  (MeOH)  след  прекратяване  на експозицията  и отстраняване  на средата  от тези 
гнезда . 
( c ) Контрола  на разтворител  DMSO (1 μl/гнездо ). 
Таблица  5 
Критерии  за параметрите  за плаката  за контрол  на качеството  
T E2  
Основно  производство  
на хормони  в 
контролата  на разт­  
ворител  (SC) ≥ 5 пъти  LOQ ≥ 2,5 пъти  LOQ 
Индукция  (10 μΜ 
форсколин ) ≥ 1,5 пъти  SC ≥ 7,5 пъти  SC 
Потискане  (1 μм 
прохлораз ) ≤ 0,5 пъти  SC ≤ 0,5 пъти  SC 
ПРОЦЕДУРА  ЗА ЕКСПОЗИЦИЯ  НА ХИМИКАЛ  
38. Предварително  инкубираните  клетки  се изваждат  от инкубатора  
(параграф  21) и се проверяват  под микроскоп , за да се гарантира , че 
са в добро  състояние  (прикрепване , морфология ) преди  дозирането . 
39. Клетките  се поставят  в камера  за биологична  безопасност , средата  с 
добавки  се отстранява  и се заменя  с нова  среда  с добавки  (1 ml/гнездо ). 
DMSO е предпочитаният  разтворител  за настоящия  метод  за 
изпитване . Въпреки  това, ако съществуват  причини  за използване  на 
други  разтворители , следва  да бъде  дадена  научна  обосновка . Клетките  
се експонират  на изпитвания  химикал  чрез прибавяне  на 1 μl от 
подходящия  изходен  разтвор  в DMSO ( виж допълнение  II към 
доклада  за валидирането  (4)) в 1 ml среда  с добавки  (обем  на гнездото ). 
Това  води  до крайна  концентрация  от 0,1 % DMSO в гнездата . За да се 
осигури  подходящо  смесване , като цяло  е за предпочитане  
подходящият  изходен  разтвор  на изпитвания  химикал  в DMSO да се 
смесва  със средата  с добавки  за получаване  на желаната  крайна  конце­  
нтрация  за всяка  доза, и сместа  да се добавя  към всяко  гнездо  веднага  
след  отстраняването  на старата  среда . Ако се използва  този вариант , 
концентрацията  на DMSO (0,1 %) следва  да остане  еднаква  във всички  
гнезда . Гнездата , съдържащи  двете  най-високи  концентрации , се 
проверяват  визуално , чрез използване  на стереоскопичен  микроскоп , 
за образуване  на утайки  или за помътняване  като показател  за 
непълна  разтворимост  на изпитвания  химикал . Ако се наблюдават  
такива  обстоятелства  (помътняване , образуване  на утайки ), 
съдържащите  следващите  по-ниски  концентрации  гнезда  също  се прег­  
леждат  (и т.н.) и концентрациите , които  не са напълно  разтворени , 
трябва  да бъдат  изключени  от по-нататъшна  оценка  и анализ . 
Плаката  се връща  в инкубатор  при 37 °C и 5 % CO  2 във въздушна  
атмосфера  за 48 часа. Структурата  на плаката  с изпитвания  химикал  
е показана  в таблица  6. Изходни  разтвори  1—7 показват  поставяне  на 
увеличаващи  се дози  от изпитвания  химикал . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 900
 
Таблица  6 
Схема  на дозиране  за експозиция  на H295R клетки  на изпитвани  химикали  в 
24-гнездова  плака  
1 2 3 4 5 6  
A DMSO DMSO DMSO Изходен  
разтвор  4 Изходен  
разтвор  4 Изходен  
разтвор  4 
B Изходен  
разтвор  1 Изходен  
разтвор  1 Изходен  
разтвор  1 Изходен  
разтвор  5 Изходен  
разтвор  5 Изходен  
разтвор  5 
C Изходен  
разтвор  2 Изходен  
разтвор  2 Изходен  
разтвор  2 Изходен  
разтвор  6 Изходен  
разтвор  6 Изходен  
разтвор  6 
D Изходен  
разтвор  3 Изходен  
разтвор  3 Изходен  
разтвор  3 Изходен  
разтвор  7 Изходен  
разтвор  7 Изходен  
разтвор  7 
40. След  48 часа експонираните  плаки  се изваждат  от инкубатора  и всяко  
гнездо  се проверява  под микроскоп  за състоянието  на клетките  
(прикрепване , морфология , степен  на сливане ) и признаци  на цитотокс­  
ичност . Средата  от всяко  гнездо  се разделя  на два равни  обема  (около  
490 μl всеки ) и се прехвърля  в два отделни  флакона , етикетирани  по 
подходящ  начин  (т.е. една  аликвотна  част за осигуряване  на резервна  
проба  за всяко  гнездо ). За предотвратяване  на изсушаването  на 
клетките  средата  се отстранява  (по един  ред или колона  наведнъж ) и 
се заменя  със средата  за изследването  за клетъчна  жизнеспособност / 
цитотоксичност . Ако клетъчната  жизнеспособност /цитотоксичността  не 
трябва  да се измерва  веднага , 200 μl PBS с Ca  2+ и Mg  2+ се добавят  към 
всяко  гнездо . Средите  се замразяват  при – 80 °С до по-нататъшното  им 
обработване  за анализ  на концентрациите  на хормони  (вж. параграфи  
44—46). T и E2 в среда , съхранявани  при температура  от – 80 °C, по 
принцип  са стабилни  за период  от най-малко  3 месеца , но независимо  
от това стабилността  на хормоните  при съхранение  следва  да бъде  
документирана  в рамките  на всяка  лаборатория . 
41. Веднага  след  отстраняването  на средата , клетъчната  жизнеспособност / 
цитотоксичността  се определят  за всяка  плака  с определена  
експозиция . 
Определяне  на клетъчната  жизнеспособност  
42. Може  да бъде  извършено  изследване  по избор  за клетъчна  жизнес­  
пособност /цитотоксичност  за определяне  на потенциалното  възде­  
йствие  на изпитвания  химикал  върху  клетъчната  жизнеспособност . 
Изследването  следва  да бъде  в състояние  да осигурява  вярно  
измерване  на процента  на жизнеспособните  клетки , намиращи  се в 
гнездото , или трябва  да се докаже , че то е пряко  сравнимо  с 
(линейна  функция  от) изпитване  Live/Dead® ( вж. приложение  III от 
доклада  за валидиране  (4)). Алтернативно  изследване , за което  е 
доказано , че е равностойно , е изпитването  с MTT [3-(4,5- димет­  
илтиазол -2-ил)-2,5-дифенилтетразолиев  бромид ] (18). Оценката  на 
жизнеспособността  на клетките  по горепосочените  методи  е относ­  
ително  измерване , което  не показва  непременно  линейни  зависимости  
с абсолютния  брой  клетки  в дадено  гнездо . Поради  това анализаторът  
следва  да извърши  субективна  паралелна  визуална  оценка  на всяко  
гнездо  и следва  да бъдат  заснети  и архивирани  цифрови  изображения  
на контролните  проби  на разтворител  и двете  най-високи  конце­  
нтрации , които  не са цитотоксични , за да може  по-късно  да се 
извърши  оценка  на истинската  плътност  на клетките , ако това се 
изисква . Ако от визуална  инспекция  или от показване  с изследване  
за жизнеспособност /цитотоксичност  изглежда , че има нарастване  на 
броя  на клетките , видимото  нарастване  трябва  да бъде  проверено . 
Ако при проверка  се установи  нарастване  на броя  на клетките , това 
трябва  да бъде  посочено  в доклада  от изпитването . Клетъчната  жизнес­  
пособност  се изразява  по отношение  на средния  отговор  от 
контролните  проби  на разтворителя , за който  се счита , че е за 100 % 
жизнеспособни  клетки , и се изчислява  по начин , подходящ  за 
използваното  изследване  за жизнеспособност /цитотоксичност . За 
изпитването  с MTT може  да се използва  следната  формула : ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 901
 
% жизнеспособни  клетки  = (отговор  в гнездото  – среден  отговор  в 
третирани  с MeOH гнезда  [= 100 % мъртви ]) ÷ (среден  отговор  в 
гнезда  със SC – среден  отговор  в третирани  с MeOH гнезда  
[= 100 % мъртви ]) 
43. Гнездата  с жизнеспособност , по-ниска  от 80 % в сравнение  със 
средната  жизнеспособност  в SC (= 100 % жизнеспособност ), не 
следва  да се включват  в окончателния  анализ  на данните . Потискането  
на стероидогенезата , протичащо  в присъствието  на почти  20 % 
цитотоксичност , следва  да бъде  внимателно  оценявано , за да се 
гарантира , че цитотоксичността  не е причината  за потискането . 
Анализ  на хормони  
44. За анализа  на T и E2 всяка  лаборатория  може  да използва  система  за 
измерване  на хормони  по свой  избор . Резервните  аликвотни  части  от 
среда  от всяка  група  за третиране  могат  да бъдат  използвани  при 
изготвянето  на разреждания  за привеждане  на концентрацията  в 
рамките  на линейната  част от стандартната  крива . Както  е отбелязано  
в параграф  29, всяка  лаборатория  трябва  да докаже  съответствието  на 
своята  система  за измерване  на хормони  (напр . ELISA, RIA, LC-MS, 
LC-MS/MS) с критериите  за КК като, преди  да извърши  независимо  
провеждане  на изпитване  за КК или преди  изпитването  на химикали , 
анализира  белязана  проба  от среда  с добавки  с вътрешна  контрола  с 
хормон  като внесена  добавка . С цел да се гарантира , че компонентите  
на системата  за изпитване  не пречат  на измерването  на хормони , може  
да се наложи  хормоните  да бъдат  извлечени  от средите  преди  тяхното  
измерване  (вж. параграф  30 за условията , при които  се изисква  или не 
се изисква  извличане ). Препоръчително  е извличането  да се извършва  
съгласно  процедурите  в допълнение  III към доклада  за валидирането  
(4). 
45. Ако за измерване  на производството  на хормони  се използва  търговски  
комплект  за изпитване , анализът  на хормони  трябва  да се извършва  
съгласно  наръчниците , предоставени  от производителя  на комплекта  за 
изпитване . Повечето  производители  имат  уникална  процедура , по 
която  се извършват  анализите  на хормони . Разрежданията  на пробите  
трябва  да бъдат  коригирани  по такъв  начин , че очакваните  конце­  
нтрации  на хормони  за контролите  на разтворител  да попадат  в 
центъра  на линейния  обхват  на стандартната  крива  на отделното  
изследване  (допълнение  III към доклада  за валидирането  (4)). Стой­  
ностите  извън  линейната  част на стандартната  крива  следва  да бъдат  
отхвърлени . 
46. Крайните  концентрации  на хормони  се изчисляват  по следния  начин : 
Пример : 
Извлечени : 450 μl среда  
Възстановени  в: 250 μl буфер , използван  при 
изследването  
Разреждане  при изследването : 1:10 ( за да може  пробата  да попадне  в 
рамките  на линейния  обхват  на 
стандартната  крива ) 
Концентрация  на хормони  при 
изследването : 150 pg/ml ( вече коригирана  до конце­  
нтрация  на ml изследвана  проба ) 
Добив : 89 % 
Крайна  концентрация  на 
хормони  = (Концентрация  на хормони  (на ml) ÷ 
добив ) (коефициент  на разреждане ) 
Крайна  концентрация  на 
хормони  = (150 pg/ml) ÷ (0,89) × (250 μl/450 μl) × 
10 = 936,3 pg/ml  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 902
 
Избор  на концентрации  на изпитване  
47. Изследването  трябва  да бъде  извършено  чрез най-малко  две независими  
провеждания . Освен  ако предварителна  информация , като например  
информацията  за границите  на разтворимост  или за цитотоксичността , 
предоставя  основа  за избора  на концентрации  на изпитване , препоръчва  
се концентрациите  на изпитване  при първоначалното  независимо  
провеждане  да бъдат  разположени  на интервали  от log  10 с максимална  
концентрация  10  –3 м. Ако химикалът  е разтворим  и не е цитотоксичен  
при никоя  от изпитваните  концентрации , и първоначалното  независимо  
провеждане  е дало  отрицателен  резултат  при всички  концентрации , тогава  
това трябва  да бъде  потвърдено  с още едно  независимо  провеждане , като се 
използват  същите  условия , както  при първоначалното  независимо  
провеждане  (таблица  7). Ако резултатите  от първоначалното  независимо  
провеждане  са неясни  (т.е. кратността  на измененията  е статистически  
значима  по отношение  на SC само  при една концентрация ) или полож­  
ителни  (т.е. кратността  на измененията  е статистически  значима  при две 
или повече  съседни  концентрации ), изпитването  следва  да бъде  повторено , 
както  е посочено  в таблица  7, чрез уточняване  на избраните  концентрации  
на изпитване . Концентрациите  на изпитване  при второто  и третото  
независими  провеждания  (ако е приложимо ) следва  да се коригират  въз 
основа  на резултатите  от концентрациите  от първоначалното  независимо  
провеждане , при които  има проявен  ефект , като същите  се обграждат  с 
концентрации , разположени  на интервал  1/2-log (например  ако в резултат  
на първоначалното  независимо  провеждане  при концентрации  0,001, 0,01, 
0,1, 1, 10, 100, 1 000 μm има получена  индукция  при концентрации  1 и 10 
μм, концентрациите  на изпитване  при второто  независимо  провеждане  
трябва  да бъдат  0,1, 0,3, 1, 3, 10, 30, 100 μм), освен  ако трябва  да бъдат  
използвани  по-ниски  концентрации  за постигане  на LOEC. В последния  
случай  при второто  независимо  провеждане  следва  да се използват  най- 
малко  пет концентрации  под най-ниската  концентрация , изпитана  при 
първоначалното  независимо  провеждане , с използване  на скала  с 
интервали  от 1/2-log. Ако при второто  независимо  провеждане  не се 
потвърди  първоначалното  независимо  провеждане  (т.е. не се получи  
статистически  значим  резултат  при концентрация , при която  преди  това е 
имало  положителен  резултат  ± 1 интервал  на концентрация ), следва  да бъде  
проведен  трети  опит , с използване  на първоначалните  условия  на изпитване . 
Неясните  резултати  от първоначалното  независимо  провеждане  се смятат  за 
отрицателни , ако наблюдаваният  ефект  не е бил потвърден  в никое  от 
последващите  независими  провеждания . Неясните  резултати  се смятат  за 
положителен  отговор  (ефект ), когато  отговорът  може  да се потвърди  в най- 
малко  още едно  независимо  провеждане  в рамките  на ± 1 интервал  на 
концентрация  (вж. раздел  55 за процедурата  за тълкуване  на данните ). 
Таблица  7 
Матрица  на решенията  при възможни  сценарии  с резултати  
Независимо  
провеждане  1 Независимо  провеждане  2 Независимо  провеждане  3 Решение  
Сценарий  Решение  Сценарий  Решение  Сценарий  Полож­  
ителен  
резултат  Отриц­  
ателен  
резултат  
Отрицателен  
резултат  Потвържда­  
ване  ( a ) Отрицателен  
резултат  Спиране  X 
Отрицателен  
резултат  Потвържда­  
ване  ( a ) Положителен  
резултат  Уточняване  ( b ) Отриц­  
ателен  
резултат  X 
Неясен  
резултат  ( c ) Уточняване  ( b ) Отрицателен  
резултат  Потвържда­  
ване  ( a ) Отриц­  
ателен  
резултат  X 
Неясен  
резултат  ( c ) Уточняване  ( b ) Отрицателен  
резултат  Потвържда­  
ване  ( а ) Полож­  
ителен  
резултат  X 
Неясен  
резултат  ( c ) Уточняване  ( b ) Положителен  
резултат  X 
Положителен  
резултат  Уточняване  ( b ) Отрицателен  
резултат  Потвържда­  
ване  ( a ) Полож­  
ителен  
резултат  X ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 903
 
Независимо  
провеждане  1 Независимо  провеждане  2 Независимо  провеждане  3 Решение  
Сценарий  Решение  Сценарий  Решение  Сценарий  Полож­  
ителен  
резултат  Отриц­  
ателен  
резултат  
Отрицателен  
резултат  Потвърждаван­  
е ( а ) Положителен  
резултат  Уточняване  ( b ) Полож­  
ителен  
резултат  X 
Положителен  
резултат  Уточняване  ( b ) Положителен  
резултат  Спиране  X  
( а ) Потвърждаване  на предходното  независимо  провеждане , като се използва  същият  план  за извършване  на опита . 
( b ) Повтаряне  на независимото  провеждане  при интервал  на концентрациите  1/2-log ( обграждащ  концентрацията , която  
при изпитването  е показала  значими  различия  в предходния  опит ). 
( c ) Различията  в кратността  на измененията  при една  концентрация  са статистически  значими  по отношение  на SC. 
Контрол  на качеството  при плаката  за изпитване  
48. В допълнение  към критериите  за плаката  за КК съществуват  и други  
критерии  за качество , които  трябва  да бъдат  спазени , и които  се 
отнасят  до приемливите  колебания  между  гнездата  за повторение , 
повтаряните  опити , линейността  и чувствителността  на системите  за 
измерване  на хормони , варирането  между  измерванията  на хормоните  
при повторенията  в рамките  на една  и съща  проба  и процента  на 
аналитичен  добив  за внесените  добавки  от хормони  след  извличането  
на средата  (ако е приложимо ; вж. параграф  30 относно  изискванията  за 
извличане ) и тези критерии  са дадени  в Таблица  8. Данните  трябва  да 
попадат  в допустимите  обхвати , определени  за всеки  параметър , който  
трябва  да се вземе  предвид  за последваща  оценка . Ако тези критерии  
не са спазени , електронната  таблица  следва  да отбележи , че критериите  
за КК не са били  спазени  за въпросната  проба  и пробата  следва  да се 
анализира  отново , или да не бъде  включена  в набора  от данни . 
Таблица  8 
Допустими  обхвати  и/или колебания  (%) за параметрите  в плаките  за изпитване  
при изследване  в H295R клетки  
(LOQ: Граница  на количествено  определяне  на системата  за измерване  на хормони . CV: 
Коефициент  на вариация ; SC: Контрола  на разтворител ; DPM: Разпадания  за минута ) 
Сравнение  между  T E2  
Основно  производство  на 
хормони  в SC Кратност  спрямо  LOQ, 
по-голяма  от ≥ 5-кратна  ≥ 2,5-кратна  
Опити  с експозиция  — 
CV в рамките  на плаката  
за SC ( гнезда  за 
повторение ) Абсолютни  конце­  
нтрации  ≤ 30 % ≤ 30 % 
Опити  с експозиция  — 
CV между  плаките  за SC 
(повтаряни  опити ) Кратност  на измененията  ≤ 30 % ≤ 30 % 
Система  за измерване  на 
хормони  — Чувствит­  
елност  Кратност  на 
откриваемите  изменения  
по отношение  на SC ≥ 5-кратна  ≥ 2,5-кратна  
Система  за измерване  на 
хормони  — CV на 
повтаряните  измервания  
за SC (  а ) Абсолютни  конце­  
нтрации  ≤ 25 % ≤ 25 % 
Извличане  на средата  — 
добив  на вътрешен  3 H 
стандарт  (ако е прил­  
ожимо ) DPM: ≥ 65 % от номиналното  
( а ) Отнася  се за повтаряни  измервания  на същата  проба  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 904
 
АНАЛИЗ  НА ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Анализ  на данни  
49. За да се оцени  относителното  увеличение /намаление  на измененото  по 
химичен  път производство  на хормони , резултатите  следва  да бъдат  
стандартизирани  спрямо  средната  стойност  на SC за всяка  плака  за 
изпитване  и изразени  като изменения  по отношение  на SC във всяка  
плака  за изпитване . Всички  данни  следва  да бъдат  изразени  като 
средна  стойност  ± 1 стандартно  отклонение  (SD).  
50. Само  данните  за хормони  от гнезда , в които  цитотоксичността  е била  
под 20 %, следва  да бъдат  включени  в анализа  на данните . Относит­  
елните  изменения  следва  да бъдат  изчислявани  по следния  начин : 
Относително  изменение  = (Концентрация  на хормони  във всяка  
плака ) ÷ (Средна  концентрация  на хормони  във всички  гнезда  с 
контрола  на разтворител ). 
51. Ако от визуална  инспекция  на гнездото  или от показване  с изследване  
за жизнеспособност /цитотоксичност , описано  в параграф  42, изглежда , 
че има нарастване  на броя  на клетките , видимото  нарастване  трябва  да 
бъде  проверено . Ако при проверка  се установи  нарастване  на броя  на 
клетките , това трябва  да бъде  посочено  в доклада  от изпитването . 
52. Преди  извършване  на статистически  анализи  следва  да бъдат  оценени  
допусканията  за нормалност  и хомогенност  на дисперсията . Нормал­  
ността  следва  да се оценява , като се използват  графики  за вероятности  
със стандартно  разпределение  или друг  подходящ  статистически  метод  
(например  изпитване  на Shapiro-Wilk). Ако данните  (кратност  на 
измененията ) не са с нормално  разпределение , следва  да се направи  
опит  за трансформация  на данните  с цел доближаване  до нормално  
разпределение . Ако данните  са с нормално  разпределение  или се 
доближават  до нормално  разпределение , различията  между  групите  с 
концентрация  на химикал  и контролите  на носител  следва  да се 
анализират  чрез използване  на параметрично  изпитване  (напр . 
изпитване  на Dunnett) като концентрацията  е независимата  проме­  
нлива , а отговорът  (кратност  на измененията ) е зависимата  проме­  
нлива . Ако данните  не са с нормално  разпределение , следва  да бъде  
използвано  подходящо  непараметрично  изпитване  (като например  
изпитване  на Kruskal Wallis или изпитване  с рангови  данни  на Steel). 
Различията  се считат  за значими  при p ≤ 0,05 . Статистически  оценки  се 
правят  въз основа  на средни  стойности  за всяко  гнездо , които  предста­  
вляват  независими  точки  с данни  от повторения . Очаква  се, че поради  
големия  интервал  между  дозите  при първоначалното  независимо  
провеждане  (скала  log  10 ) в много  случаи  няма  да е възможно  да се 
опишат  ясни  зависимости  концентрация -отговор , при които  двете  най- 
големи  дози  да са в линейната  част на сигмоидната  крива . Следов­  
ателно  при първоначалното  независимо  провеждане  или при всякакви  
други  набори  от данни , за които  е изпълнено  това условие  (например  в 
случаите , когато  не може  да бъде  оценена  максималната  ефикасност ), 
се използва  статистика  с фиксирана  променлива  от тип I, както  е 
описано  по-горе. 
53. Когато  повече  от две точки  с данни  са разположени  върху  линейната  
част на кривата  и когато  максималните  ефикасности  могат  да бъдат  
изчислени  — както  се очаква  при някое  от 2-рите  независими  
провеждания , които  са при интервали  в полулогаритмичен  мащаб  на 
концентрациите  на експозиция  — следва  за изчисляване  на конце­  
нтрации , при които  се наблюдава  ефект  (напр . EC50 и EC20), да се 
използва  Probit, Logit или друг  подходящ  регресионен  модел . 
54. Резултатите  трябва  да бъдат  представени  както  в графичен  (стъл­  
бовидна  диаграма , представляваща  средната  стойност  ± 1 SD), така и 
в табличен  вид (LOEC/NOEC, посока  на ефекта  и сила  на максималния  
отговор , който  е частта  доза-отговор  от данните ) (вж. фигура  3 за 
пример ). Оценката  на данните  се счита  за валидна  само  ако се 
основава  на най-малко  две независими  провеждания . Опитът  или 
независимото  провеждане  се считат  за независими , ако са извършени  
на различна  дата с използване  на нов набор  от разтвори  и контроли . 
Използваният  при независими  провеждания  2 и 3 обхват  от конце­  
нтрации  (ако е необходимо ) може  да се приспособи  въз основа  на 
резултатите  от независимо  провеждане  1, с цел по-добро  определяне  
на обхвата  доза-отговор , съдържащ  LOEC (вж. параграф  47). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 905
 
Фигура  3 
Пример  за представянето  и оценката  на данните , получени  по време  на извършването  на 
изследването  в H295R клетки , в графичен  и в табличен  вид. 
Звездичките  показват  статистически  значими  разлики  от контролата  на разтворител  (p < 0,05 ). LOEC: 
Най-ниската  концентрация , при която  се наблюдава  ефект ; Максимално  изменение : Максимална  сила  на 
отговора , наблюдавана  при която  и да е концентрация  спрямо  средната  стойност  на отговора  при SC (= 1)
  
Химикал  LOEC Максимално  изменение  
Форсколин  0,01 0,15 пъти  
Летрозол  0,001 29 пъти  
Процедура  за анализ  на данните  
55. Изследваният  химикал  се оценява  като положителен , ако кратността  на 
индукцията  от стойността  за контролата  на разтворител  е статист­  
ически  значима  (p ≤ 0,05) при две съседни  концентрации  в най- 
малко  две независими  провеждания  (таблица  7). Изпитваният  
химикал  се счита  за отрицателен  след  две независими  провеждания  с 
отрицателен  резултат , или след  три независими  провеждания , 
включващи  две независими  провеждания  с отрицателен  и едно  с 
неясен  или положителен  резултат . Ако данните , получени  в резултат  
от три независими  опита , не покриват  критериите  за решение , 
изброени  в таблица  7, опитните  резултати  не могат  да бъдат  тълкувани . 
Резултатите  при концентрации , превишаващи  границата  на разт­  
воримост , или при цитотоксични  концентрации  не следва  да бъдат  
включвани  в тълкуването  на резултатите . 
Доклад  от изпитването  
56. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Извършваща  изпитвания  лаборатория  
— Наименование  и местоположение  на лабораторията ; 
— Ръководител  на изследването  и друг  персонал , и отговорностите  им 
във връзка  с изследването ; 
— Дати , на които  е започнало  и приключило  изследването ; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 906
 
Изпитван  химикал , реагенти  и контроли  
— Идентичност  (наименование /CAS №, както  е подходящо ), източник , 
партида /номер  на партидата , идентичност , чистота , доставчик  и 
характеризиране  на изпитвания  химикал , реагентите  и контролите ; 
— Физична  природа  и относими  физични  и химични  свойства  на 
изпитвания  химикал ; 
— Условия  на съхранение  и метод  и честота  на изготвяне  на 
изпитвани  химикали , реагенти  и контроли ; 
— Стабилност  на изпитвания  химикал ; 
Клетки  
— Източник  и тип на клетките ; 
— Брой  клетъчни  пасажи  (идентификатор  на клетъчни  пасажи ) за 
клетките , използвани  в изпитването ; 
— Описание  на процедурите  за поддържане  на клетъчните  култури ; 
Изисквания  преди  изпитването , ако е приложимо  
— Описание  и резултати  от изпитването  за пречене  на изследването  за 
хормони  от страна  на химикала ; 
— Описание  и резултати  от измерванията  на ефикасността  на извл­  
ичането  на хормони ; 
— Стандартни  и калибрационни  криви  за всички  аналитични  
изследвания , които  трябва  да бъдат  извършени ; 
— Граници  на откриване  за избраните  аналитични  изследвания ; 
Условия  на изпитването  
— Състав  на средата ; 
— Концентрация  на изпитвания  химикал ; 
— Клетъчна  плътност  (очаквана  или измерена  концентрации  на клетки  
след  24 часа и 48 часа) 
— Разтворимост  на изпитвания  химикал  (граница  на разтворимост , 
ако е определена ); 
— Време  и условия  на инкубация ; 
Резултати  от изпитванията  
— Необработени  данни  за всяко  гнездо  с контрола  и изпитвани  
химикали  — всяко  измерване  от повторение  е във формата  на 
оригиналните  данни , предоставяни  от инструмента , използван  за 
измерване  на производството  на хормони  (например  оптична  
плътност , флуоресцентни  единици , DPM и т.н.); 
— Валидиране  на нормалността  или обяснение  на трансформирането  
на данните ; 
— Средни  отговори  ± 1 SD за всяко  измерено  гнездо ; 
— Данни  за цитотоксичността  (изпитвани  концентрации , които  са 
причинили  цитотоксичността ); 
— Потвърждение , че са спазени  изискванията  за КК; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 907
 
— Относителна  промяна  в сравнение  с контрола  на разтворител , 
коригирана  за цитотоксичност ; 
— Стълбовидна  диаграма , показваща  относителното  изменение  (крат­  
ността ) при всяка  концентрация , SD и статистическата  значимост , 
както  е посочено  в параграфи  49—54.  
Тълкуване  на данните  
— Към резултатите  се прилага  процедурата  за тълкуване  на данните  и 
се обсъждат  констатациите ; 
Обсъждане  
— Има ли в резултат  от изследването  множество  показания  за възмож­  
ността  данните  за T/E2 да бъдат  повлияни  от непреки  ефекти  върху  
глюкокортикоидните  и минералкортикоидните  пътища ? 
Заключения  
ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD (2002), OECD Conceptual Framework for the Testing and 
Assessment of Endocrine Disrupting Chemicals, в допълнение  2 към 
глава  Б.54 от настоящото  приложение  
(2) Hecker, M., Newsted, J.L., Murphy, M.B., Higley, E.B., Jones, P.D., Wu, 
R. and Giesy, J.P. (2006), Human adrenocarcinoma (H295R) cells for 
rapid in vitro determination of effects on steroidogenesis: Hormone production,  Toxicol. Appl. Pharmacol.,  217, 114-124.
 
(3) Hecker, M., Hollert, H., Cooper, R., Vinggaard, A.-M., Akahori, Y., 
Murphy, M., Nellemann, C., Higley, E., Newsted, J., Wu, R., Lam, P., 
Laskey, J., Buckalew, A., Grund, S., Nakai, M., Timm, G., and Giesy, J. 
P. (2007), The OECD validation program of the H295R steroidgenesis assay for the identification of in vitro inhibitors or inducers of testosterone and estradiol production, Phase 2: inter laboratory pre-validation studies.  
Env. Sci. Pollut. Res ., 14, 23 — 30.
 
(4) OECD (2010),  Multi-Laboratory Validation of the H295R Steroidogenesis 
Assay to Identify Modulators of Testosterone and Estradiol Production , 
OECD Series of Testing and Assessment № 132, ENV/JM/MO ­
NO(2010)31, Paris. Available at [http://www.oecd.org/document/30/ 0,3746,en_2649_34377_1916638_1_1_1 _1,00.html]
 
(5) OECD (2010),  Peer Review Report of the H295R Cell-Based Assay for 
Steroidogenesis,  OECD Series of Testing and Assessment № 133, ENV/ 
JM/MONO(2010)32, Paris. Available at: [http://www.oecd.org/document/ 
30/0,3746,en_2649_34377_1916638_1_1_1_1, 00.html]  
(6) Battelle (2005), Detailed Review Paper on Steroidogenesis, Available at: 
[http://www.epa.gov/endo/pubs/edmvs/steroidogenesis_drp_fi ­
nal_3_29_05.pdf]  
(7) Hilscherova, K., Jones, P. D., Gracia, T., Newsted, J. L., Zhang, X., 
Sanderson, J. T., Yu, R. M. K., Wu, R. S. S. and Giesy, J. P. (2004), Assessment of the Effects of Chemicals on the Expression of Ten Steroi ­
dogenic Genes in the H295R Cell Line Using Real-Time PCR,  Toxicol. 
Sci., 81, 78-89.
 
(8) Sanderson, J. T., Boerma, J., Lansbergen, G. and Van den Berg, M. 
(2002), Induction and inhibition of aromatase (CYP19) activity by various classes of pesticides in H295R human adrenocortical carcinoma cells,  Toxicol. Appl. Pharmacol.,  182, 44-54.
 
(9) Breen, M.S., Breen, M., Terasaki, N., Yamazaki, M. and Conolly, R.B. 
(2010), Computational model of steroidogenesis in human H295R cells to 
predict biochemical response to endocrine-active chemicals: Model deve ­
lopment for metyrapone,  Environ. Health Perspect.,  118: 265-272.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 908
 
(10) Higley, E.B., Newsted, J.L., Zhang, X., Giesy, J.P. and Hecker, M. (2010), 
Assessment of chemical effects on aromatase activity using the H295R cell 
line, Environ. Sci. Poll. Res.,  17:1137-1148.  
(11) Gazdar, A. F., Oie, H. K., Shackleton, C. H., Chen, T. R., Triche, T. J., 
Myers, C. E., Chrousos, G. P., Brennan, M. F., Stein, C. A. and La Rocca, 
R. V. (1990), Establishment and characterization of a human adreno ­
cortical carcinoma cell line that expresses Multiple pathways of steroid biosynthesis,  Cancer Res.,  50, 5488-5496.
 
(12) He, Y.H., Wiseman, S.B., Zhang, X.W., Hecker, M., Jones, P.D., El-Din, 
M.G., Martin, J.W. and Giesy, J.P. (2010), Ozonation attenuates the steroi ­
dogenic disruptive effects of sediment free oil sands process water in the 
H295R cell line,  Chemosphere,  80:578-584.  
(13) Zhang, X.W., Yu, R.M.K., Jones, P.D., Lam, G.K.W., Newsted, J.L., 
Gracia, T., Hecker, M., Hilscherova, K., Sanderson, J.T., Wu, R.S.S. and Giesy, J.P. (2005), Quantitative RT-PCR methods for evaluating toxicant-induced effects on steroidogenesis using the H295R cell line,  
Environ. Sci. Technol.,  39:2777-2785.
 
(14) Higley, E.B., Newsted, J.L., Zhang, X., Giesy, J.P. and Hecker, M. (2010), 
Differential assessment of chemical effects on aromatase activity, and E2 
and T production using the H295R cell line,  Environ. Sci. Pol. Res.,  
17:1137-1148.  
(15) Rainey, W. E., Bird, I. M., Sawetawan, C., Hanley, N. A., Mccarthy, J. L., 
Mcgee, E. A., Wester, R. and Mason, J. I. (1993), Regulation of human adrenal carcinoma cell (NCI-H295) production of C19 steroids,  J. Clin. 
Endocrinol. Metab.,  77, 731-737.
 
(16) Глава  Б.55 от настоящото  приложение : Биологично  изследване  на 
Hershberger при плъхове : Краткосрочно  скринингово  изследване  за 
(анти )андрогенни  свойства . 
(17) Shapiro, R., and Page, L.B. (1976), Interference by 2,3-dimercapto-1- 
propanol (BAL) in angiotensin I radioimmunoassay,  J. Lab. Clin. Med.,  2, 
222-231.  
(18) Mosmann, T. (1983), Rapid colorimetric assay for growth and survival: 
application to proliferation and cytotoxicity assays,  J. Immunol. Methods.,  
65, 55-63.  
(19) Brock, B.J., Waterman, M.R. (1999). Biochemical differences between rat 
and human cytochrome P450c17 support the different steroidogenic needs of these two species, Biochemistry. 38:1598-1606.
 
(20) Oskarsson, A., Ulleras, E., Plant, K., Hinson, J. Goldfarb, P.S., (2006), 
Steroidogenic gene expression in H295R cells and the human adrenal 
gland: adrenotoxic effects of lindane in vitro, J. Appl. Toxicol., 
26:484-492.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 909
 
Допълнение  
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Сливане  означава  позволеното  за клетките  покритие  или разпространение  
върху  средата  за клетъчни  култури  или в нея. 
Химикал  означава  вещество  или смес . 
CV означава  коефициент  на вариация  и се определя  като съотношение  
между  стандартното  отклонение  на дадено  разпределение  и неговата  
средноаритметична  стойност . 
CYP  означава  цитохром  Р450 монооксигенази , семейство  от гени  и 
произведени  от тях ензими , които  участват  в катализирането  на голямо  
разнообразие  от биохимични  реакции , включително  синтезата  и мета­  
болизма  на стероидни  хормони . 
DPM  означава  разпадания  в минута . Това  е откритият  в продължение  на 
една  минута  брой  атоми  в определено  количество  радиоактивен  материал , 
при които  е настъпило  разпадане . 
E2 е 17β-естрадиол , най-важният  естроген  при бозайниците . 
H295R  клетките  са клетки  от карцином  на кората  на надбъбреците  при 
човека , които  притежават  физиологични  характеристики  на зонално  
недиференцирани  фетални  клетки  от надбъбречната  жлеза  при човека , и 
които  експресират  всички  ензими  от стероидогенния  път. Те са на разп­  
оложение  от АТСС . 
Среда  за замразяване  се използва  за замразяване  и съхраняване  на 
замразени  клетки . Състои  се от изходна  среда  плюс  BD NuSerum и димет­  
илсулфоксид . 
Линеен  обхват  е обхватът  в рамките  на стандартната  крива  за дадена  
система  за измерване  на хормони , в който  резултатите  са пропорционални  
на концентрацията  на присъстващия  в пробата  определяем  компонент . 
LOQ  означава  „граница  за количествено  определяне “ и представлява  най- 
малкото  количество  на химикал , което  може  да бъде  разграничено  от 
липсата  на този химикал  (стойност  на празната  проба ) в рамките  на 
посочена  граница  на доверителен  интервал . За целите  на настоящия  метод  
LOQ обикновено  се определя  от производителя  на системите  за изпитване , 
ако не е указана  по друг  начин . 
LOEC  е най-ниската  концентрация , при която  се наблюдава  ефект , най- 
ниското  равнище  на концентрация , при което  от статистическа  гледна  
точка  отговорът  при изследването  е различен  от този при контролата  на 
разтворител . 
NOEC  е концентрация  без наблюдавано  въздействие , която  е най-високата  
изпитвана  концентрация , ако при изследването  не е получен  положителен  
отговор . 
Пасаж  е броят  пъти  на разделяне  на клетките  след  инициирането  на 
култура  от клетки  от замразени  количества . На първоначалния  пасаж , 
иницииран  от замразените  количества , се дава номер  едно  (1). Клетките , 
които  са били  разделени  1 път се наричат  пасаж  2 и т.н. 
PBS е фосфатно  буфериран  физиологичен  разтвор  на Dulbecco.  
Контрол  на качеството , съкратено  КК, се отнася  до мерките , необходими  
за осигуряване  на валидни  данни . 
Плака  за контрол  на качеството  е 24-гнездова  плака , съдържаща  две 
концентрации  на положителни  и отрицателни  контроли  за наблюдение  на 
параметрите  на нова  партида  от клетки  или за предоставяне  на положит­  
елните  контроли  за изследването , когато  се изпитват  химикали . 
Независимо  провеждане  е независим  опит , характеризиран  с нов набор  от 
разтвори  и контроли . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 910
 
Изходна  среда  е основата  за приготвянето  на други  реагенти . Състои  се от 
DMEM/F12 ( смес  в съотношение  1: 1 от Dulbecco's Modified Eagle's Medium 
и Ham's F-12 Nutrient) в 15 mM буфер  HEPES без фенолно  червено  или 
натриев  бикарбонат . Натриев  бикарбонат  се добавя  като буфер , вж. 
допълнение  II към доклада  за валидирането  (4). 
Среда  с добавки  се състои  от изходна  среда  плюс  BD Nu-Serum и ITS+ 
premium mix, вж. допълнение  II към доклада  за валидирането  (4). 
Стероидогенеза  е път, водещ  до синтез  на различните  стероидни  хормони  
от холестерол . Няколко  предшественици  от пътя  за синтез  на стероиди , като 
прогестерон  и тестостерон , сами  по себе си са важни  хормони , но също  така 
служат  и като прекурсори  за хормони , произвеждани  по-нататък  по пътя  за 
синтез . 
T означава  тестостерон , един  от двата  най-важни  андрогена  при боза­  
йниците . 
Изпитван  химикал  е всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) с използване  
на настоящия  метод  за изпитване . 
Плака  за изпитване  е плака , на която  H295R клетки  се експонират  на 
изпитвани  химикали . Плаките  за изпитване  съдържат  контролата  на разт­  
ворител  и изпитвания  химикал  в седем  равнища  на концентрация  
трикратно . 
Трипсин  1X е разреден  разтвор  на ензима  трипсин , панкреатична  серин - 
протеаза , използван  за отделяне  на клетките  от плака  за клетъчни  култури , 
вж. Допълнение  III към доклада  за валидиране  (4). ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 911
 
Б.58. ИЗСЛЕДВАНИЯ  ЗА ГЕННИ  МУТАЦИИ  В СОМАТИЧНИ  И 
ЗАРОДИШНИ  КЛЕТКИ  ПРИ  ТРАНСГЕННИ  ГРИЗАЧИ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на насоките  за 
изпитване  на ОИСР  (ТG) 488 (2013). На разположение  са методи  на 
ЕС за изпитване  за широк  набор  от изпитвания  за мутации  in vitro , 
чрез които  могат  да бъдат  откривани  хромозомни  и/или генни  
мутации . Съществуват  методи  за изпитване  за крайни  точки  in vivo  
(т.е., хромозомни  аберации  и непрограмиран  синтез  на ДНК ); те 
обаче  не измерват  генни  мутации . Изследванията  за мутации  при 
трансгенни  гризачи  (TGR) запълват  нуждата  от практични  и широко­  
достъпни  изпитвания  in vivo  за генни  мутации . 
2. Изследванията  за мутации  при TGR са разгледани  подробно  (24)(33). 
Те използват  трансгенни  плъхове  и мишки , които  съдържат  множество  
копия  на хромозомно  интегрирани  плазмидни  или фагови  вектори  
совалки . Трансгените  съдържат  репортерни  гени  за откриване  на 
различни  видове  мутации , индуцирани  in vivo  от изпитвани  химикали . 
3. Мутациите , възникващи  при гризачи , се отчитат  чрез отделяне  на 
трансгена  и анализиране  на фенотипа  на репортерния  ген в 
бактериален  гостоприемник , в който  репортерният  ген липсва . 
Изследванията  за генни  мутации  при TGR измерват  мутациите , 
индуцирани  в генетично  неутрални  гени , отделени  от почти  всички  
тъкани  при гризачи . Тези  изпитвания , следователно , заобикалят  
много  от съществуващите  ограничения , свързани  с изследване  на 
генна  мутация  in vivo  в собствени  гени  (напр . ограничени  тъкани , 
подходящи  за анализ , положителен /отрицателен  подбор  по 
отношение  на мутации ). 
4. Оценката  на значимостта  на доказателствения  материал  показва , че 
трансгените  отговарят  на мутагени  по подобен  начин  на собствените  
гени , особено  по отношение  на откриването  на заместване  на двойка  
бази, мутации  с изместване  на рамката  на разчитане  и малки  делеции  и 
инсерции  (24).  
5. На Международните  семинари  относно  изпитванията  за 
генотоксичност  (IWGT) е потвърдено  включването  на изследванията  
за генни  мутации  при TGR за откриване  in vivo  на генни  мутации , и 
е препоръчан  протокол  за тяхното  изпълнение  (15)(29). Настоящият  
метод  за изпитване  се основава  на тези препоръки . Допълнителен  
анализ  в подкрепа  на използването  на настоящия  протокол  е на разп­  
оложение  в (16).  
6. Очаква  се, че в бъдеще  може  да съществува  възможност  за съчетаване  
на изследванията  за генни  мутации  при TGR с изследвания  за токс­  
ичност  при повтарящи  се дози  (глава  Б.7 от настоящото  приложение ). 
Въпреки  това са необходими  данни  за гарантиране , че чувствит­  
елността  на изследванията  за генни  мутации  при TGR не се влияе  от 
по-краткия  еднодневен  период  между  края  на периода  на прилагане  и 
времето  на пробовземане , както  се прилага  при изследвания  за токс­  
ичност  при повтарящи  се дози , в сравнение  с 3-дневния  период , 
използван  в изследванията  за генни  мутации  при TGR. Също  така са 
необходими  данни , които  да показват , че параметрите  на 
изследванията  при повтарящи  се дози  няма  да бъдат  неблагоприятно  
повлияни  от използването  на трансгенни  породи  гризачи  вместо  
обичайни  породи  гризачи . Когато  тези данни  бъдат  налични , 
настоящият  метод  за изпитване  ще бъде  актуализиран . 
7. Определенията  на ключови  термини  са дадени  в допълнението . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 912
 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
8. Изследванията  за генни  мутации  при TGR, за които  има достатъчно  
налични  данни  за подкрепа  на използването  им в настоящия  метод  за 
изпитване , са: мишка , носеща  бактериофаг , съдържащ  lacZ  (Muta™ ­
Mouse); мишка , носеща  плазмид , съдържащ  lacZ ; мишка  и плъх  gpt 
delta ( gpt и Spi  – );мишка  и плъх , носещи  lacI (Big Blue®), извършвани  
при стандартни  условия . В допълнение , изследването  с положителна  
селекция  на cII може  да бъде  използвано  за оценка  на мутациите  в 
моделите  Big Blue® и Muta™Mouse. Мутагенезата  в моделите  с TGR 
се оценява  по принцип  като честота  на мутантите ; ако е необходимо  
обаче , чрез молекулярен  анализ  на мутациите  може  да бъде  предо­  
ставена  допълнителна  информация  (вж. параграф  24).  
9. Тези  изпитвания  за генна  мутация  in vivo  при гризачи  са особено  
важни  за оценка  на мутагенната  опасност , поради  това че отговорите  
при изследванията  зависят  от метаболизма  in vivo,  от фармакокинет­  
иката , от процесите  на репарация  на ДНК  и синтеза  на ДНК  чрез 
повредени  участъци , въпреки  че те могат  да варират  според  вида , 
тъканта  и вида  увреждане  на ДНК . Изследването  in vivo  за генни  
мутации  е полезно  за по-нататъшното  проучване  на мутагенен  ефект , 
установен  чрез система  in vitro , както  и за проследяване  на резултатите  
от изпитвания , използващи  други  крайни  точки  in vivo  (24). Освен  че 
има причинно -следствена  връзка  с предизвикването  на рак, генната  
мутация  е относима  крайна  точка  за прогнозиране  на основани  на 
мутация  неракови  заболявания  на соматичните  тъкани  (12)(13), както  
и на болести , предавани  чрез зародишната  линия . 
10. Ако има доказателства , че изпитваният  химикал , или относим  мета­  
болит , не достига  никоя  от представляващите  интерес  тъкани , 
извършването  на изследване  за генни  мутации  при TGR не е 
подходящо . 
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
11. В изследванията , описани  в параграф  8, прицелният  ген по произход  е 
от бактерия  или бактериофаг , и средството  за отделяне  от геномната  
ДНК  при гризачи  е чрез включването  на трансгена  в λ бактериофаг  
или плазмид  като вектор  совалка . Процедурата  включва  извличането  
на геномна  ДНК  от представляваща  интерес  тъкан  от гризач , обработка  
in vitro  на геномната  ДНК  (т.е. опаковане  на λ вектори , или лигиране  и 
електропорация  на плазмиди  за отделяне  на вектора  совалка ) и 
последващо  откриване  на мутации  в бактерии  гостоприемници  при 
подходящи  условия . При изследванията  се използват  неутрални  
трансгени , които  могат  да бъдат  лесно  изолирани  от повечето  тъкани . 
12. Основният  опит , свързан  с генна  мутация  при TGR, включва  третиране  
на гризач  с химикал  за определен  период  от време . Химикалите  могат  
да се прилагат  посредством  всякакви  подходящи  пътища , включително  
имплантация  (напр . изпитване  на медицинско  изделие ). Общата  продъ­  
лжителност  на дозиране  на дадено  животно  се нарича  период  на прил­  
агане . Прилагането  обикновено  е последвано  от период  от време , 
предхождащ  умъртвяването , през които  химикалът  не се прилага , и 
по време  на който  нерепарираните  повреди  в ДНК  се фиксират  в 
стабилни  мутации . В литературата  този период  се нарича  по 
различни  начини  — период  на проява , период  на фиксиране  или 
период  на експресия ; краят  на този период  е моментът  на пробовз­  
емането  (15)(29). След  като животното  бъде  умъртвено , геномната  
ДНК  се изолира  от представляващата  интерес  тъкан  или тъкани  и се 
пречиства . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 913
 
13. Данните  за отделна  тъкан  на животно  от множество  опакования / 
лигирания  обикновено  се обобщават  и честотата  на мутантите  като 
цяло  се оценява  с помощта  на общо  между  10  5 и 10  7 образуващи  
плака  единици  или образуващи  колония  единици . При използване  на 
методи  за положителна  селекция  общият  брой  образуващи  плака  
единици  се определя  с отделен  набор  неселективни  плаки . 
14. Разработени  са методи  за положителна  селекция  за улесняване  на 
откриването  на мутации  както  в gpt гена [gpt delta мишка  и плъх , 
gpt – фенотип  (20)(22)(28)], така и в гена lacZ  [Muta™Mouse или lacZ,  
съдържащи  се в плазмиди  в мишки  (3)(10)(11)(30)]; докато  мутациите  
на гена lacI в животни  Big Blue® се откриват  чрез неселективен  метод , 
с който  мутантите  се установяват  чрез генериране  на оцветени  (в 
синьо ) плаки . Методологията  за положителна  селекция  позволява  
също  така и откриване  на точкови  мутации , възникващи  в гена cII от 
вектора  совалка  на λ бактериофага  [Big Blue® мишка  или плъх , и 
Muta™Mouse (17)] и мутации  чрез делеции  в гените  λ red  и gam  
[Spi  – селекция  при gpt delta мишка  или плъх  (21)(22)(28)]. Честотата  
на мутантитесе  изчислява , като се раздели  броят  на плаките /пла­  
змидите , съдържащи  мутации  в трансгена , на общия  брой  плаки /пла­  
змиди , отделени  от същата  проба  от ДНК . При изследванията  за генни  
мутации  при TGR честотата  на мутантите  е докладваният  параметър . 
Освен  това дадена  честота  на мутация  може  да се определи  като дял от 
клетки , носещи  независими  мутации ; за това изчисление  се изисква  
корекция  за клонална  експанзия  чрез определяне  на първичната  
структура  на изолираните  мутанти  (24).  
15. Мутациите , отчитани  в изследванията  на lacI, lacZ, cII  и gpt за точкова  
мутация ,се състоят  предимно  от мутации  чрез заместване  на двойка  
бази, мутации  с изместване  на рамката  на разчитане  и малки  инсерции / 
делеции . Относителният  дял на тези типове  мутации  сред  спонтанните  
мутации  е подобен  на този, който  се наблюдава  в собствения  ген Hprt . 
Големи  делеции  са открити  само  при изследванията  със селекция  на 
Spi – и с плазмиди , съдържащи  lacZ  (24). Представляващите  интерес  
мутации  са мутации  in vivo , които  възникват  при мишки  или 
плъхове . Мутациите  in vitro  и ex vivo , които  могат  да възникнат  по 
време  на отделяне  на фаг/плазмид , репликация  или репарация , са 
относително  редки  и в някои  системи  могат  да бъдат  конкретно  
определени , или изключени  от бактерията  гостоприемник /системата  
за положителна  селекция . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Подготовка  
Избор  на животински  вид 
16. Понастоящем  са налични  разнообразни  модели  за откриване  на генни  
мутации  в трансгенни  мишки  и тези системи  са по-широко  използвани  
от моделите  с трансгенни  плъхове . Ако плъховете  са явно  по- 
подходящ  модел  от мишките  (например  при проучване  на механизма  
на карциногенезата  за тумор , наблюдаван  само  при плъхове  с оглед  
съпоставяне  с изследване  за токсичност  при плъхове , или ако е 
известно , че метаболизмът  при плъховете  е по-представителен  за 
човешкия  метаболизъм ) трябва  да бъде  взето  под внимание  
използването  на модели  с трансгенни  плъхове . 
Условия  на отглеждане  и хранене  
17. Температурата  в експерименталното  помещение  с животните  трябва  в 
идеалния  случай  да бъде  22 °C (± 3 °C). Въпреки  че относителната  
влажност  следва  да бъде  най-малко  30 % и е препоръчително  тя да 
не надвишава  70 %, освен  по време  на почистване  на стаята , целта  е 
относителната  влажност  да се поддържа  в интервала  50—60 %. Освет­  
лението  трябва  да бъде  изкуствено , като дневната  последователност  е 
12 часа светлина , следвани  от 12 часа тъмнина . За храненето  могат  да 
се използват  обичайните  лабораторни  хранителни  режими  с 
неограничен  достъп  до вода  за пиене . Изборът  на хранителен  режим  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 914
 
може  да бъде  повлиян  от нуждата  да се осигури  подходящо  смесване  с 
изпитван  химикал , когато  прилагането  му е по този път. Животните  
трябва  да бъдат  разпределени  в малки  групи  (не повече  от пет) от един  
и същ пол, ако не се очаква  агресивно  поведение . Животните  могат  да 
се настаняват  отделно , ако това е научно  обосновано . 
Подготовка  на опитните  животни  
18. Здрави , млади , полово  зрели  животни  в зряла  възраст  (на възраст  от 
8—12 седмици  в началото  на третирането ) се разпределят  на случаен  
принцип  в контролни  групи  и третирани  групи . На животните  се дава 
уникална  идентифакация . Животните  се аклиматизират  към 
лабораторните  условия  поне  пет дни. Клетките  трябва  да бъдат  
подредени  по такъв  начин , че възможните  ефекти  в резултат  на мест­  
оположението  на клетката  да бъдат  сведени  до минимум . В началото  
на изследването  вариациите  в теглото  на животните  следва  да са 
минимални  и да не превишават  ± 20 % от средното  тегло  на всеки  пол. 
Подготовка  на дозите  
19. Твърдите  изпитвани  химикали  следва  да се разтворят  или суспендират  
в подходящи  разтворители  или носители , или да се смесят  в 
хранителния  режим  или в питейната  вода  преди  дозирането  на 
животните . Течните  изпитвани  химикали  могат  да се дозират  
директно  или да се разредят  преди  дозиране . При експозиция  чрез 
инхалация  изпитваните  химикали  могат  да се прилагат  като газ, пари  
или аерозол  с твърда /течна  фаза , в зависимост  от техните  физични  и 
химични  свойства . Следва  да се използват  пресни  смеси  на изпитвания  
химикал , освен  ако данните  за стабилността  показват , че е допустимо  
съхранение . 
Условия  на изпитване  
Разтворител /носител  
20. Разтворителят /носителят  не следва  да има токсични  ефекти  при 
използваните  обеми  на доза, а също  така не следва  да има съмнения  
за химическа  реакция  между  него  и изпитвания  химикал . Ако се 
използват  други  освен  добре  познатите  разтворители /носители , 
включването  им следва  да се подкрепи  от референтни  данни  за 
съвместимостта  им. Препоръчва  се, винаги  когато  е възможно , първо  
да се разглежда  възможността  за прилагането  на вода  като разтворит­  
ел/носител . 
Положителни  контроли  
21. Обикновено  следва  да се използват  паралелни  положителни  контроли  с 
животни . Въпреки  това за лаборатории , които  са доказали  пригод­  
ността  си (вж. параграф  23) и редовно  използват  тези изследвания , 
във всяко  изследване  може  да бъде  включена  ДНК  от предходни  
третирани  като положителни  контроли  животни  за потвърждаване  на 
успешността  на метода . Такава  ДНК  от предходни  опити  следва  да е 
получена  от същите  животински  видове  и представляващи  интерес  
тъкани , и да е съхранявана  по подходящ  начин  (вж. параграф  36). 
Когато  се използват  паралелни  положителни  контроли , не е необ­  
ходимо  прилагането  при тях да е по същия  път като изпитвания  
химикал ; въпреки  това, за положителните  контроли  следва  да е 
известно , че предизвикват  мутации  в една  или повече  тъкани , предста­  
вляващи  интерес  във връзка  с изпитвания  химикал . Дозите  на 
химикали  за положителните  контроли  следва  да бъдат  подбрани  така, 
че да се получат  слаби  или умерени  ефекти , въз основа  на които  да 
може  да се извърши  критична  оценка  на параметрите  и на чувствит­  
елността  на изследването . Примери  за химикали  за положителни  
контроли  и някои  от техните  прицелни  тъкани  са включени  в таблица  1. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 915
 
Таблица  1 
Примери  за химикали  за положителни  контроли  и някои  от техните  прицелни  тъкани  
Химикал  за положителна  
контрола  и CAS № Наименование  по EINECS и 
EINECS № Характеристики  Прицелна  тъкан  за мутация  
Плъхове  Мишки  
N-етил -N-нитрозоуреа  
[CAS № 759-73-9]  N-етил -N-нитрозоуреа  
[212-072-2] Мутаген  с пряко  
действие  Черен  дроб , 
бял дроб  Костен  мозък , 
колон , епител  на 
колона , черва , 
черен  дроб , бял 
дроб , далак , 
бъбреци , 
гранулозни  клетки  
от яйчниците , 
мъжки  зародишни  
клетки  
Етилкарбамат  (уретан ) 
[CAS № 51-79-6] Уретан  
[200-123-1] Мутаген , изисква  
метаболизъм , но 
произвежда  само  
слаби  ефекти  Костен  мозък , 
предстомах , тънко  
черво , черен  дроб , 
бял дроб , далак  
2,4-диаминотолуен  
(CAS № 95-80-7) 4-метил -m- 
фенилендиамин  
[202-453-1] Мутаген , изисква  
метаболизъм , 
също  така полож­  
ителен  в Spi  – 
изследване  Черен  дроб  Черен  дроб  
Бензо [a]пирен  
(CAS № 50-32-8) бензо [def]хризен  
[200-028-5] Мутаген , изисква  
метаболизъм  Черен  дроб , 
була , Костен  мозък , 
гърди , колон , 
предстомах , 
жлезист  стомах , 
сърце , черен  дроб , 
бял дроб , мъжки  
зародишни  клетки  
Отрицателни  контроли  
22. Отрицателни  контроли , третирани  само  с разтворител  или носител , и в 
друго  отношение  третирани  по същия  начин  като третираните  групи , 
следва  да се включат  за всеки  момент  на пробовземане . При липсата  на 
предходни  или публикувани  данни  за контроли , показващи , че 
избраният  разтворител /носител  не предизвиква  никакви  неблаг­  
оприятни  или мутагенни  ефекти , за всеки  момент  на пробовземане  
следва  да бъдат  включени  и нетретирани  контроли , за да се установи  
допустимостта  на контролата  на носител . 
Проверка  на пригодността  на лабораторията  
23. Пригодността  за тези изследвания  следва  да бъде  установена  чрез 
доказване  на способността  за възпроизвеждане  на очаквани  резултати  
от публикувани  данни  (24) за: 1) честоти  на мутантите  с химикали  за 
положителни  контроли  (включително  слабите  отговори ), като 
например  посочените  в таблица  1, химикали  без мутагенно  действие  
и контроли  на носител ; и 2) отделяне  на трансген  от геномна  ДНК  
(например  ефикасност  на опаковането ). 
Определяне  на първичната  структура  при мутанти  
24. За нормативни  цели  не се изисква  определяне  на първичната  структура  
на ДНК  на мутанти , в частност  когато  е получен  ясен  положителен  или 
отрицателен  резултат . Независимо  от това данните  от определянето  на 
първичната  структура  могат  да бъдат  от полза , когато  се наблюдават  
големи  колебания  между  отделните  индивиди . В тези случаи  
определянето  на първичната  структура  може  да се използва , за да се ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 916
 
изключи  възможността  за множество  мутанти  от една  мутация  или за 
клониране  чрез определяне  на дела  на уникални  мутанти  от дадена  
тъкан . Определяне  на първичната  структура  на приблизително  10 
мутанта  от тъкан  и от животно  следва  да бъде  достатъчно  за лесно  
определяне  дали  в честотата  на мутантите  няма  включени  клонирани  
мутанти ; Определяне  на първичната  структура  на 25 мутанта  може  да 
бъде  необходимо , за да се коригира  математически  честотата  на 
мутантите  за клоналност . Определяне  на първичната  структура  на 
мутанти  също  може  да бъде  взето  под внимание  при откриване  на 
неголеми  увеличения  на честотата  на мутантите  (т.е. непосредствено  
над стойностите  за нетретираните  контроли ). Различията  в 
мутационния  спектър  между  колониите  от мутанти  от третирани  и от 
нетретирани  животни  могат  да подкрепят  мутагенен  ефект  (29). Също  
така, мутационните  спектри  могат  да бъдат  полезни  за разработването  
на механистични  хипотези . Когато  определянето  на първичната  
структура  трябва  да бъде  включено  като част от протокола  от 
изследването , при планирането  на такива  изследвания  следва  да се 
обърне  специално  внимание , по-специално  по отношение  на броя  на 
мутантите  с определена  първична  структура  в проба , за да се постигне  
достатъчна  статистическа  мощност  в съответствие  с използвания  
статистически  модел  (вж. параграф  43).  
ПРОЦЕДУРА  
Брой  и пол на животните  
25. Броят  животни  в група  следва  да бъде  предварително  определен  така, 
че да е достатъчен , за да осигури  статистическата  мощност , необ­  
ходима  за откриване  най-малко  на удвояване  на честотата  на мута­  
нтите . Групите  са с размер  най-малко  пет животни ; независимо  от 
това, ако статистическата  мощност  е недостатъчна , броят  животни  
трябва  да се увеличи , както  се изисква . Обикновено  следва  да се 
използват  мъжки  животни . Може  да има случаи , когато  би било  обос­  
новано  изпитването  само  на женски  животни ; например , при изпитване  
на лекарства , специфични  за жени , или когато  се изследва  метабо­  
лизъм , специфичен  за женския  пол. Ако съществуват  значителни  
различия  между  половете  по отношение  на токсичността  или на мета­  
болизма , тогава  се изисква  използване  и на мъжки , и на женски  екзем­  
пляри . 
Период  на прилагане  
26. Въз основа  на наблюдения , че мутациите  се натрупват  с всяко  
третиране , е необходима  схема  с повтаряща  се доза, с ежедневно  
третиране  в продължение  на 28 дни. Това  по принцип  се счита  за 
приемливо  както  за генериране  на достатъчно  натрупване  на мутации  
от слаби  мутагени , така и за предоставяне  на времето  на експозиция , 
подходящо  за откриване  на мутации  в бавно  пролифериращи  органи . 
За някои  оценки  могат  да бъдат  подходящи  алтернативни  схеми  на 
третиране , и тези алтернативни  графици  на дозиране  следва  да бъдат  
научно  обосновани  в протокола . Периодите  на третиране  не трябва  да 
бъдат  по-кратки  от времето , необходимо  за пълното  индуциране  на 
всички  относими  метаболизиращи  ензими , и по-кратки  третирания  
могат  да доведат  до необходимост  от използване  на множество  
моменти  на пробовземане , които  са подходящи  за органи  с различни  
степени  на пролиферация . Във всички  случаи  при обосновката  на 
даден  протокол  следва  да се използва  цялата  налична  информация  
(например  за обща  токсичност  или метаболизъм  и фармакокинетика ), 
особено  при отклонение  от горните  стандартни  препоръки . По-дълги  
от 8 седмици  периоди  на третиране , въпреки  че могат  да доведат  до 
увеличаване  на чувствителността , следва  да бъдат  ясно  обяснени  и 
обосновани , тъй като дългите  периоди  на третиране  могат  да доведат  
до видимо  увеличение  на честотата  на мутантите  чрез клонална  
експанзия  (29).  
Нива  на доза  
27. Нивата  на доза следва  да се основават  на резултатите  от изследване  за 
определяне  на обхвата  на дозите , измерващо  общата  токсичност , 
проведено  с използване  на същия  път на експозиция , или на 
резултатите  от предходни  изследвания  за субакутна  токсичност . 
Нетрансгенните  животни  от същата  порода  гризачи  могат  да се 
използват  за определяне  на обхватите  на дозите . С цел получаване  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 917
 
на информация  за зависимостта  доза-отговор , основното  изпитване  
следва  да включва  отрицателна  контролна  група  (вж. параграф  22) и 
най-малко  три, разположени  на подходящи  интервали , нива  на доза, с 
изключение  на случаите , когато  е използвана  пределната  доза (вж. 
параграф  28). Най-високата  доза следва  да е максималната  допустима  
доза (МДД ). Най-високата  доза се определя  като доза, генерираща  
признаци  на такава  токсичност , че би могло  да се очаква  по-високи  
нива  на доза при същия  график  на дозиране  да доведат  до леталност . 
Химикали  със специфична  биологична  активност  при ниски , 
нетоксични  дози  (като хормони  и митогени ) и химикали , които  
показват  насищане  по отношение  на токсикокинетични  свойства , 
могат  да бъдат  изключения  от критериите  за определяне  на дозата  и 
следва  да се оценяват  за всеки  конкретен  случай . Нивата  на доза 
следва  да обхващат  от максимална  до слаба  токсичност  или липса  на 
токсичност . 
Изпитване  при пределна  концентрация  
28. Ако опити  за определяне  на обхвата  на дозите , или съществуващи  
данни  от свързани  породи  гризачи , показват  че режим  на третиране  
най-малко  при пределна  концентрация  (вж. по-долу ) не дава 
забележими  токсични  ефекти , а генотоксичност  не би могла  да се 
очаква  на базата  на данни  от структурно  свързани  химикали , то 
тогава  пълно  изследване  с три нива  на доза може  да не се смята  за 
необходимо . За период  на прилагане  от 28 дни (т.е. 28 ежедневни  
третирания ) пределната  доза е 1 000 mg/kg телесно  тегло /ден. За 
периоди  на прилагане  от 14 дни или по-кратки  пределната  доза е 
2 000 mg/kg телесно  тегло /ден (графици  на дозиране , различни  от 28 
ежедневни  третирания , следва  да бъдат  научно  обосновани  в прот­  
окола ; вж. параграф  26).  
Прилагане  на дозите  
29. Изпитваният  химикал  обикновено  се прилага  със сонда , като се 
използва  стомашна  тръба  или подходяща  интубационна  канюла . Като  
цяло , при планирането  на изследването  следва  да бъде  взет предвид  
очакваният  път на експозиция  на човека . Следователно  други  пътища  
на експозиция  (като например  чрез питейна  вода , подкожно , 
интравенозно , локално , чрез вдишване , интратрахеално , чрез 
хранителен  режим  или чрез имплантация ) могат  да бъдат  приемливи , 
ако могат  да бъдат  обосновани . Интраперитонеалното  инжектиране  не 
се препоръчва , тъй като то не е физиологично  относим  път на 
експозиция  на човека . Максималният  обем  течност , който  може  да се 
приложи  еднократно  със сонда  или инжекция , зависи  от големината  на 
изпитваното  животно . Обемът  не трябва  да надвишава  2 ml/100 g 
телесно  тегло . Обеми , по-високи  от този, следва  да се обосноват . С 
изключение  на дразнещи  или корозивни  химикали , при които  обик­  
новено  се проявяват  изострени  ефекти  при по-високи  концентрации , 
варирането  в изпитвания  обем  трябва  да бъде  сведено  до минимум  
чрез регулиране  на концентрацията  с оглед  осигуряване  на постоянен  
обем  при всички  нива  на доза. 
Момент  на пробовземане  
Соматични  клетки  
30. Моментът  на пробовземане  е критична  променлива , защото  се 
определя  от периода , който  е необходим  за фиксирането  на мутациите . 
Този  период  е специфичен  за дадена  тъкан  и изглежда  е свързан  с 
времето  за обновяване  на популацията  от клетки , като отговорът  при 
костния  мозък  и червата  е бърз , докато  отговорът  при черния  дроб  е 
много  по-бавен . Подходящ  компромис  за измерване  на честотите  на 
мутантите  както  в бързо , така и в бавно  пролифериращите  тъкани , е 28 
последователни  ежедневни  третирания  (както  е посочено  в параграф  
26) и пробовземане  три дни след  последното  третиране ; максималната  
честота  на мутантите  може  обаче  да не се прояви  в бавно  прол­  
ифериращите  тъкани  при тези условия . Ако бавно  пролифериращите  
тъкани  са от особено  значение , тогава  може  да бъде  по-подходящ  по- 
късен  момент  на пробовземане  — 28 дни след  28-дневния  период  на 
прилагане  (16)(29). В такива  случаи , вторият  момент  на пробовземане  
заменя  момента  на пробовземане  след  3 дни, и изисква  научна  обос­  
новка . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 918
 
Зародишни  клетки  
31. Изследванията  с TGR са подходящи  за изследване  на индуцирането  на 
генна  мутация  в мъжки  зародишни  клетки  (7)(8)(27), за което  графикът  
и кинетиката  на сперматогенезата  са добре  установени  (27). Малкият  
брой  яйцеклетки , налични  за анализ , дори  след  свръховулация , както  и 
фактът , че няма  синтез  на ДНК  в овоцити , изключва  възможността  за 
определяне  на мутации  в женските  зародишни  клетки  чрез използване  
на трансгенни  изследвания  (31).  
32. Моментите  на пробовземане  за мъжки  зародишни  клетки  следва  да се 
изберат  така, че да бъдат  взети  проби  в обхвата  на експонираните  
видове  клетки  по време  на развитието  на зародишните  клетки , и 
така, че прицелният  за пробовземането  етап да е получил  достатъчна  
експозиция . Времето  за нарастване  на развиващите  се зародишни  
клетки  от сперматогониални  стволови  клетки  до зрели  сперматозоиди , 
достигнали  семепровода /опашката  на епидидима , е ~ 49 дни при 
мишки  (36) и ~ 70 дни при плъхове  (34)(35). След  28-дневна  
експозиция  с последващи  три дни преди  момента  на пробовземане  
акумулираните  сперматозоиди , събрани  от семепровода /опашката  на 
епидидима  (7)(8), представляват  клетъчна  популация , експонирана  
приблизително  по време  на втората  половина  на сперматогенезата , 
което  включва  и мейотичния , и постмейотичния  период , но не 
сперматогониалния  период  или периода  на стволовите  клетки . С цел 
адекватно  пробовземане  на клетки  в семепровода /опашката  на 
епидидима , които  са били  сперматогониални  стволови  клетки  по 
време  на периода  на експозиция , се изисква  допълнителен  момент  на 
пробовземане  най-малко  7 седмици  (мишки ) или 10 седмици  (плъхове ) 
след  прекратяване  на третирането . 
33. Клетките , получени  от семенните  каналчета  след  режима  от 28 + 3 
дни, изграждат  смесена  популация , обогатена  за всички  етапи  на 
развиващите  се зародишни  клетки  (7)(8). Пробовземането  на тези 
клетки  за откриването  на генна  мутация  не предоставя  оценка  на 
етапите , на които  се индуцират  мутации  в зародишните  клетки , 
която  да е толкова  точна , колкото  тази, която  може  да се получи  
при пробовземане  на сперматозоиди  от семепровода /опашката  на 
епидидима  (тъй като от каналчетата  се пробовземат  редица  типове  
зародишни  клетки  и има известни  количества  соматични  клетки , 
замърсяващи  тази клетъчна  популация ). Независимо  от това 
вземането  на проби  от клетки  от семенните  каналчета  в допълнение  
към сперматозоидите  от семепровода /опашката  на епидидима  след  
режим  за пробовземане  от само  28 + 3 дни ще обхване  в известна  
степен  клетки , експонирани  през по-голямата  част от етапите  на 
развитие  на зародишните  клетки , и може  да бъде  полезно  за 
откриване  на някои  мутагени  в зародишни  клетки . 
Наблюдения  
34. Общи  клинични  наблюдения  следва  да бъдат  извършвани  поне  един  
път дневно , за предпочитане  по едно  и също  време  всеки  ден и като се 
има предвид  пиковият  период  за поява  на очакваните  ефекти  след  
дозиране . Здравословното  състояние  на животните  следва  да се 
записва . Поне  два пъти  дневно  всички  животни  следва  да се набл­  
юдават  за заболяемост  и смъртност . Теглото  на всички  животни  
следва  да се измерва  поне  един  път в седмицата  и при умъртвяването . 
Консумацията  на храна  се измерва  най-малко  един  път седмично . Ако 
изпитваният  химикал  се прилага  чрез водата  за пиене , консумацията  на 
вода  следва  да се измерва  при всяка  смяна  на водата  и най-малко  един  
път в седмицата . Животни , проявяващи  нелетални  признаци  на 
прекалена  токсичност , следва  да се умъртвят  преди  приключването  
на периода  на изпитване  (23).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 919
 
Събиране  на тъкани  
35. Обосновката  за събиране  на тъкани  следва  да бъде  ясно  определена . 
Тъй като е възможно  индуцирането  на мутации  да бъде  изследвано  в 
почти  всяка  тъкан , изборът  на тъкани , които  трябва  да бъдат  събрани , 
следва  да се основава  на причината  за провеждането  на изследването  и 
на всички  съществуващи  данни  за мутагенност , канцерогенност  или 
токсичност  на проучвания  химикал . Важни  фактори  за разглеждане  
следва  да включват  пътя  на прилагане  (въз основа  на вероятния  път 
или пътища  на експозиция  на човека ), прогнозираното  разпределение  в 
тъканите , както  и възможния  механизъм  на действие . При липсата  на 
каквато  и да било  съпътстваща  информация  следва  да бъдат  събрани  
няколко  соматични  тъкани , които  могат  да представляват  интерес . Те 
следва  да представляват  бързо  пролифериращите , бавно  прол­  
ифериращите  тъкани  и тъканите  от местата  на контакт . В допълнение , 
сперматозоидите  от семепровода /опашката  на епидидима  и 
развиващите  се зародишни  клетки  от семенните  каналчета  (както  е 
описано  в параграфи  32 и 33) следва  да се събират  и съхраняват  в 
случай  че се изисква  бъдещ  анализ  за мутагенност  за зародишни  
клетки . Теглото  на органите  следва  да бъде  измерено , като за по- 
големите  органи  от всички  животни  следва  да бъде  взета  една  и 
съща  площ . 
Съхранение  на тъкани  и ДНК  
36. Тъканите  (или тъканните  хомогенати ) следва  да се съхраняват  при 
температура  – 70 °С или по-ниска , и да се използват  за изолиране  на 
ДНК  в рамките  на 5 години . Изолираната  ДНК , съхранявана  в 
охладено  състояние  при 4 °С в подходящ  буфер , следва  да се 
използва  оптимално  за анализ  на мутации  в рамките  на 1 година . 
Селекция  на тъкани  за анализ  на мутанти  
37. Изборът  на тъкани  трябва  да бъде  основан  на съображения  като: 1) 
пътя  на прилагане  или мястото  на първия  контакт  (напр . жлезист  
стомах  при прилагане  по орален  път, бял дроб  при прилагане  чрез 
инхалация , или кожа  при локално  прилагане ); и 2) наблюдаваните  
фармакокинетични  параметри  в изследвания  за обща  токсичност , 
които  показват  свързаното  с тъканта  елиминиране , задържане  или 
натрупване , или прицелните  органи  за токсичността . Ако са 
извършени  последващи  изследвания  за канцерогенност , трябва  да 
бъдат  взети  под внимание  прицелните  тъкани  за канцерогенност . 
Изборът  на тъкани  за анализ  следва  да увеличи  до максимум  
откриването  на химикали , които  са мутагени  с пряко  действие  in 
vitro , бързо  метаболизират , имат  висока  реактивоспособност  или се 
абсорбират  слабо , или онези , за които  прицелната  тъкан  се определя  
от пътя  на прилагане  (6). 
38. При липсата  на съпътстваща  информация  и като се вземе  предвид  
мястото  на контакт , дължащо  се на пътя  на прилагане , черният  дроб  
и още поне  една  тъкан  с висока  скорост  на протичане  на деленето  
(напр . жлезист  стомах , костен  мозък ) следва  да бъдат  оценени  за 
мутагенност . В повечето  случаи  горепосочените  изисквания  могат  да 
се постигнат  от анализи  на две внимателно  подбрани  тъкани , но в 
някои  случаи  ще са необходими  три или повече . Ако има причини  
за конкретна  загриженост  относно  ефектите  върху  зародишните  
клетки , включително  положителни  отговори  при соматични  клетки , 
следва  тъкани  от зародишни  клетки  да бъдат  оценени  за мутации . 
Методи  за измерване  
39. Стандартни  лабораторни  или публикувани  методи  за откриване  на 
мутанти  са на разположение  за препоръчваните  трансгенни  модели : 
ламбда  бактериофаги  и плазмиди , носещи  lacZ  (30); мишки , носещи  
lacI (2)(18); мишки , носещи  gpt delta (22); плъхове , носещи  gpt delta 
(28);  cII (17). Измененията  следва  да бъдат  обосновани  и надлежно  
документирани . Данните  от множество  опакования  могат  да бъдат  
обобщени  и използвани  за постигане  на достатъчен  брой  плаки  или 
колонии . Независимо  от това, необходимостта  от голям  брой  реакции  
по опаковане  за постигане  на достатъчен  брой  плаки  може  да е 
показател  за наличието  на ниско  качество  на ДНК . В такива  случаи  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 920
 
към данните  трябва  да се подхожда  предпазливо , тъй като те могат  да 
са ненадеждни . Оптималният  общ брой  плаки  или колонии  от проба  
ДНК  се регулира  от статистическата  вероятност  за откриване  на дост­  
атъчен  брой  мутанти  при дадена  честота  на мутанти  при спонтанна  
мутация . Като  цяло  се изискват  най-малко  125 000 до 300 000 плаки , 
ако честотата  на мутанти  при спонтанна  мутация  е от порядъка  на 3 × 
10 –5 (15). За изследването  с Big Blue®, носещи  lacI , е важно  да се 
докаже , че целият  набор  от фенотипове  на мутанти  с определен  цвят  
може  да бъде  открит  посредством  включването  на подходящи  
контроли  с определен  цвят  паралелно  с всяко  поставяне  в гнезда . 
Тъканите  и получените  проби  (единици ) следва  да бъдат  обработени  
и анализирани  с използването  на блокова  схема , в която  елементите  от 
контролната  група  на разтворител /носител , положителната  контролна  
група  (ако се използва ) или положителната  контролна  ДНК  (където  е 
уместно ) и всяка  една  от третираните  групи  се обработват  заедно . 
ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
Обработка  на резултатите  
40. Индивидуалните  данни  за животните  следва  да се представят  в 
таблица . Опитната  единица  е животното . Докладът  следва  да 
включва  общия  брой  образуващи  плака  единици  (pfu) или образуващи  
колония  единици  (cfu), броя  на мутантите , и честотата  на мутантите  за 
всяка  тъкан  от всяко  животно . Ако има множество  реакции  на опак­  
оване /изолиране , следва  да се докладва  броят  на реакциите  на проба  от 
ДНК . Макар  че данните  за всяка  отделна  реакция  трябва  да бъдат  
съхранени , само  общите  pfu или cfu трябва  да бъдат  докладвани . 
Трябва  да бъдат  докладвани  данните  за токсичност  и клиничните  
признаци , както  е посочено  в параграф  34. Трябва  да бъдат  
представени  всички  резултати  от определянето  на първичната  
структура  за всеки  анализиран  мутант , и да бъдат  посочени  изчис­  
ленията  на честотата  на мутация  в резултат  от тях за всяко  животно  
и тъкан . 
Статистическа  оценка  и тълкуване  на резултатите  
41. Има няколко  критерия  за определяне  на положителен  резултат , като 
например  свързано  с дозата  увеличение  на честотата  на мутантите  или 
явно  увеличение  на честотата  на мутантите  в група  с еднократна  доза в 
сравнение  с контролната  група  на разтворител /носител . Най-малко  три 
третирани  с определена  доза групи  трябва  да бъдат  анализирани , за да 
бъдат  получени  достатъчно  данни  за анализ  доза-отговор . Независимо  
от това, че първостепенното  съображение  следва  да е биологичната  
относимост , могат  да се използват  подходящи  статистически  методи  
като помощно  средство  за оценката  на резултатите  от изпитването  
(4)(14)(15)(25)(26). При използваните  статистически  изпитвания  за 
опитна  единица  следва  да се счита  животното . 
42. Изпитван  химикал , за който  резултатите  не удовлетворяват  горните  
критерии , се смята  за немутагенен  в настоящото  изследване . За биолог­  
ичната  относимост  на даден  отрицателен  резултат  следва  да бъде  
потвърдена  експозицията  на тъканта . 
43. За подпомагане  при тълкуването  на резултатите  от анализите  за 
определяне  на първичната  структура  на ДНК  на разположение  са 
редица  статистически  подходи  (1)(5)(9)(19).  
44. Проучването  дали  наблюдаваните  стойности  са в рамките  на 
контролния  обхват  от предходни  изследвания , или извън  него , може  
да осигури  насоки  при оценката  на биологичната  значимост  на 
отговора  (32).  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 921
 
Доклад  от изпитването  
45. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— данни  за идентификация  и CAS №, ако са известни ; 
— източник , номер  на партидата , при наличност ; 
— физическа  природа  и чистота ; 
— физични  и химични  свойства , относими  към провеждането  на 
изследването ; 
— стабилност  на изпитвания  химикал , ако е известна ; 
Разтворител /носител : 
— обосновка  за избор a на носител ; 
— разтворимост  и стабилност  на изпитвания  химикал  в разтворител / 
носител , ако са известни ; 
— изготвяне  на рецептурите  за хранителен  режим , питейна  вода  или 
инхалация ; 
— аналитични  определяния , свързани  с рецептурите  (напр . усто­  
йчивост , хомогенност , номинални  концентрации ); 
Изпитвани  животни : 
— използван  вид/порода  и обосновка  за избора ; 
— брой , възраст  и пол на животните ; 
— източник , условия  на отглеждане , хранителен  режим  и т.н.; 
— индивидуално  тегло  на животните  в началото  на изпитването , в т.ч. 
обхват  на телесното  тегло , средни  стойности  и стандартно  
отклонение  за всяка  група ; 
Условия  на изпитване : 
— положителни  и отрицателни  (носител /разтворител ) контролни  
данни ; 
— данни  от изследването  за установяване  на обхвата ; 
— обосновка  за избора  на нивото  на доза; 
— подробности  за приготвянето  на изпитвания  химикал ; 
— подробна  информация  относно  прилагането  на изпитвания  
химикал ; 
— обосновка  на пътя  на прилагане ; 
— методи  за измерване  на токсичността  за животните , включително , 
когато  е необходимо , хистопатологични  или хематологични  
анализи  и честота , с която  са правени  наблюдения  върху  
животните  или е измервано  телесното  тегло ; 
— методи  за проверка  дали  изпитваният  химикал  е достигнал  до приц­  
елната  тъкан , или до общото  кръвообращение , ако са получени  
отрицателни  резултати ; ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 922
 
— действителна  доза (mg/kg телесно  тегло  дневно ), изчислена  от 
концентрацията  на изпитвания  химикал  в хранителния  режим / 
питейната  вода  (ppm), и консумация , ако е приложимо ; 
— подробности  относно  качество  на храната  и водата ; 
— подробно  описание  на графиците  на третиране  и вземане  на проби  
и обосновки  за направения  избор ; 
— метод  за умъртвяване ; 
— процедури  за изолиране  и съхраняване  на тъкани ; 
— методи  за изолиране  на геномна  ДНК  на гризачи , отделяне  на 
трансгена  от геномната  ДНК  и включване  на трансгенна  ДНК  в 
бактерия  гостоприемник ; 
— източник  и номера  на партиди  за всички  клетки , комплекти  и 
реагенти  (когато  е приложимо ); 
— методи  за изброяване  на мутантите ; 
— методи  за молекулярен  анализ  на мутанти  и използване  при 
корекция  за клоналност  и/или изчисляване  на честоти  на мутация , 
ако е приложимо ; 
Резултати : 
— състояние  на животните  преди  и през целия  период  на изпитване , 
включително  признаци  на токсичност ; 
— телесно  тегло  и тегло  на органи  при умъртвяването ; 
— за всяка  тъкан /животно  — брой  на мутантите , брой  на оценените  
плаки  или колонии , честота  на мутантите ; 
— за всяка  тъкан /група  животни  — брой  на реакциите  на опаковане  
на проба  от ДНК , общ брой  на мутантите , средна  честота  на мута­  
нтите , стандартно  отклонение ; 
— взаимоотношение  доза-отговор , където  е възможно ; 
— за всяка  тъкан /животно  — брой  на независимите  мутанти  и средна  
честота  на мутация , където  е бил извършен  молекулярен  анализ ; 
— паралелни  отрицателни  контролни  данни  и отрицателни  контролни  
данни  от предишни  изследвания , с обхвати , средни  стойности  и 
стандартни  отклонения ; 
— паралелни  положителни  контролни  данни  (или ДНК  от предходно  
третирани  като положителни  контроли  животни ); 
— аналитични  определения , ако има такива  (например  концентрации  
на ДНК , използвани  при пакетиране , данни  за определяне  на 
първичната  структура  на ДНК ); 
— статистически  анализи  и използвани  методи ; 
Обсъждане  на резултатите  
Заключение  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 923
 
ЛИТЕРАТУРА  
(1) Adams,  W.T. and T.R.  Skopek  (1987), ‘Statistical  Test  for the Comparison 
of Samples from Mutational Spectra’,  J. Mol. Biol ., 194: 391-396.  
(2) Bielas, J.H. (2002), ‘A more Efficient Big Blue® Protocol Improves 
Transgene Rescue and Accuracy in an Adduct and Mutation Measure ­
ment’,  Mutation Res. , 518: 107–112.  
(3) Boerrigter, M.E., M.E. Dollé, H.-J. Martus, J.A. Gossen and J. Vijg 
(1995), ‘Plasmid-based Transgenic Mouse Model for Studying  in vivo  
Mutations’  Nature , 377(6550): 657–659  
(4) Carr, G.J. and N.J. Gorelick (1995), ‘Statistical Design and Analysis of 
Mutation Studies in Transgenic Mice’,  Environ. Mol. Mutagen , 25(3): 
246–255.  
(5) Carr, G.J. and N.J. Gorelick (1996), ‘Mutational Spectra in Transgenic 
Animal Research: Data Analysis and Study Design Based upon the Mutant or Mutation Frequency’,  Environ. Mol. Mutagen,  28: 405–413.
 
(6) Dean, S.W., T.M. Brooks, B. Burlinson, J. Mirsalis, B. Myhr, L. Recio 
and V. Thybaud (1999), ‘Transgenic Mouse Mutation Assay Systems can 
Play an important Role in Regulatory Mutagenicity Testing  in vivo  for the 
Detection of Site-of-contact Mutagens’,  Mutagenesis , 14(1): 141–151.  
(7) Douglas, G.R., J. Jiao, J.D. Gingerich, J.A. Gossen and L.M. Soper(1995), 
‘Temporal and Molecular Characteristics of Mutations Induced by Ethyl ­
nitrosourea in Germ Cells Isolated from Seminiferous Tubules and in Spermatozoa of  lacZ  Transgenic Mice’,  Proc. Natl. Acad. Sci. USA , 92: 
7485-7489.
 
(8) Douglas, G.R., J.D. Gingerich, L.M. Soper and J. Jiao (1997), ‘Toward an 
Understanding of the Use of Transgenic Mice for the Detection of Gene Mutations in Germ Cells’,  Mutation Res. , 388(2-3): 197-212.
 
(9) Dunson, D.B. and K.R. Tindall (2000), ‘Bayesian Analysis of Mutational 
Spectra’,  Genetics , 156: 1411–1418.  
(10) Gossen, J.A., W.J. de Leeuw, C.H. Tan, E.C. Zwarthoff, F. Berends, P.H. 
Lohman, D.L. Knook and J. Vijg(1989), ‘Efficient Rescue of Integrated Shuttle Vectors from Transgenic Mice: a Model for Studying Mutations in  
vivo’, Proc. Natl. Acad. Sci. USA , 86(20): 7971–7975.
 
(11) Gossen, J.A. and J. Vijg (1993), ‘A Selective System for lacZ-Phage using 
a Galactose-sensitive  E. coli  Host’,  Biotechniques , 14(3): 326, 330.  
(12) Erikson, R.P. (2003), ‘Somatic Gene Mutation and Human Disease other 
than Cancer’,  Mutation Res. , 543: 125-136.  
(13) Erikson, R.P. (2010), ‘Somatic Gene Mutation and Human Disease other 
than Cancer: an Update’,  Mutation Res. , 705: 96-106.  
(14) Fung, K.Y., G.R. Douglas and D. Krewski (1998), ‘Statistical Analysis of  
lacZ Mutant Frequency Data from Muta™Mouse Mutagenicity Assays’,  
Mutagenesis , 13(3): 249–255.  
(15) Heddle, J.A., S. Dean, T. Nohmi, M. Boerrigter, D. Casciano, G.R. 
Douglas, B.W. Glickman, N.J. Gorelick, J.C. Mirsalis, H.-J Martus, T.R. Skopek, V. Thybaud, K.R.Tindall and N. Yajima (2000), ‘In vivo Tran ­
sgenic Mutation Assays’,  Environ. Mol. Mutagen ., 35: 253-259.
 
(16) Heddle, J.A., H.-J. Martus and G.R. Douglas (2003), ‘Treatment and 
Sampling Protocols for Transgenic Mutation Assays’,  Environ. Mol. 
Mutagen. , 41: 1-6.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 924
 
(17) Jakubczak, J.L., G. Merlino, J.E. French, W.J. Muller, B. Paul, S. Adhya 
and S. Garges (1996), ‘Analysis of Genetic Instability during Mammary 
Tumor Progression using a novel Selection-based Assay for  in vivo  
Mutations in a Bacteriophage λ Transgene Target’,  Proc. Natl. Acad. 
Sci. USA , 93(17): 9073–9078.  
(18) Kohler, S.W., G.S. Provost, P.L. Kretz, A. Fieck, J.A. Sorge and J.M. 
Short (1990), ‘The Use of Transgenic Mice for Short-term, in vivo Muta ­
genicity Testing’, Genet. Anal. Tech. Appl., 7(8): 212–218.  
(19) Lewis P.D., B. Manshian, M.N. Routledge, G.B. Scott and P.A. Burns 
(2008), ‘Comparison of Induced and Cancer-associated Mutational Spectra 
using Multivariate Data Analysis’, Carcinogenesis, 29(4): 772-778.  
(20) Nohmi, T., M. Katoh, H. Suzuki, M. Matsui, M. Yamada, M. Watanabe, 
M. Suzuki, N. Horiya, O. Ueda, T. Shibuya, H. Ikeda and T. Sofuni 
(1996), ‘A new Transgenic Mouse Mutagenesis Test System using Spi  – 
— and 6-thioguanine Selections’, Environ. Mol. Mutagen., 28(4): 
465–470.  
(21) Nohmi, T., M. Suzuki, K. Masumura, M. Yamada, K. Matsui, O. Ueda, H. 
Suzuki, M. Katoh, H. Ikeda and T. Sofuni (1999), ‘Spi  – Selection: an 
Efficient Method to Detect γ-ray-induced Deletions in Transgenic Mice’,  
Environ. Mol. Mutagen ., 34(1): 9–15.  
(22) Nohmi, T., T. Suzuki and K.I. Masumura (2000), ‘Recent Advances in the 
Protocols of Transgenic Mouse Mutation Assays’,  Mutation Res. , 
455(1–2): 191–215.  
(23) OECD (2000), Guidance Document on the Recognition, Assessment and 
Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation, Series on Testing and Assessment, № 19, 
ENV/JM/MONO(2000)7, OECD, Paris.
 
(24) OECD (2009), Detailed Review Paper on Transgenic Rodent Mutation 
Assays, Series on Testing and Assessment, № 103, ENV/JM/MO ­
NO(2009)7, OECD, Paris.  
(25) Piegorsch, W.W., B.H. Margolin, M.D. Shelby, A. Johnson, J.E. French, 
R.W. Tennant and K.R. Tindall (1995), ‘Study Design and Sample Sizes 
for a lacI Transgenic Mouse Mutation Assay’, Environ. Mol. Mutagen., 
25(3): 231–245.  
(26) Piegorsch, W.W., A.C. Lockhart, G.J. Carr, B.H. Margolin, T. Brooks, ... 
G.R. Douglas, U.M. Liegibel, T. Suzuki, V. Thybaud, J.H. van Delft and N.J. Gorelick (1997), ‘Sources of Variability in Data from a Positive Selection lacZ Transgenic Mouse Mutation Assay: an Interlaboratory 
Study’, Mutation. Res., 388(2–3): 249–289.
 
(27) Singer, T.M., I.B. Lambert, A. Williams, G.R. Douglas and C.L. Yauk 
(2006), ‘Detection of Induced Male Germline Mutation: Correlations and 
Comparisons between Traditional Germline Mutation Assays, Transgenic 
Rodent Assays and Expanded Simple Tandem Repeat Instability Assays’, Mutation. Res., 598: 164-193.
 
(28) Toyoda-Hokaiwado, N., T. Inoue, K. Masumura, H. Hayashi, Y. 
Kawamura, Y. Kurata, M. Takamune, M. Yamada, H. Sanada, T. Umemura, A. Nishikawa and T. Nohmi (2010), ‘Integration of in vivo 
Genotoxicity and Short-term Carcinogenicity Assays using F344 gpt delta 
Transgenic Rats: in vivo Mutagenicity of 2,4-diaminotoluene and 2,6- diaminotoluene Structural Isomers’, Toxicol. Sci., 114(1): 71-78.
 
(29) Thybaud, V., S. Dean, T. Nohmi, J. de Boer, G.R. Douglas, B.W. 
Glickman, N.J. Gorelick, J.A. Heddle, R.H. Heflich, I. Lambert, H.-J. Martus, J.C. Mirsalis, T. Suzuki and N. Yajima (2003), ‘ In vivo  Tran­
sgenic Mutation Assays’,  Mutation Res ., 540: 141-151.
 
(30) Vijg, J. and G.R. Douglas (1996), ‘Bacteriophage λ and Plasmid  lacZ  
Transgenic Mice for studying Mutations  in vivo ’ in: G. Pfeifer (ed.),  
Technologies for Detection of DNA Damage and Mutations, Part II,  
Plenum Press, New York, NY, USA, pp. 391–410.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 925
 
(31) Yauk, C.L., J.D. Gingerich, L. Soper, A. MacMahon, W.G. Foster and 
G.R. Douglas (2005), ‘A  lacZ  Transgenic Mouse Assay for the Detection 
of Mutations in Follicular Granulosa Cells’,  Mutation Res ., 578(1-2): 117- 
123. 
(32) Hayashi, M., K. Dearfield, P. Kasper, D. Lovell, H.-J. Martus, V. Thybaud 
(2011), ‘Compilation and Use of Genetic Toxicity Historical Control Data’, Mutation Res., doi:10.1016/j.mrgentox.2010.09.007.
 
(33) OECD (2011),  Retrospective Performance Assessment of OECD Test 
Guideline on Transgenic Rodent Somatic and Germ Cell Gene Mutation Assays , Series on Testing and Assessment, № 145, ENV/JM/MO ­
NO(2011)20, OECD, Paris.
 
(34) Clermont, Y. (1972), ‘Kinetics of spermatogenesis in mammals semini ­
ferous epithelium cycle and spermatogonial renewal’. Physiol. Rev. 52: 
198-236.  
(35) Robaire, B., Hinton, B.T., and Oregbin-Crist, M.-C. (2006), ‘The Epidi ­
dymis’, in Neil, J.D., Pfaff, D.W., Chalis, J.R.G., de Kretser, D.M., Richards, J.S., and P. M, Wassarman (eds.), Physiology of Reproduction, Elsevier, the Netherlands, pp. 1071-1148.
 
(36) Russell, L.B. (2004), ‘Effects of male germ-cell stage on the frequency, 
nature, and spectrum of induced specific-locus mutations in the mouse’, 
Genetica, 122: 25–36.  ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 926
 
Допълнение  
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Период  на прилагане : общият  период , в продължение  на който  е дозирано  
дадено  животно . 
Заместване  на двойка  бази : тип мутация , която  води  до заместване  на 
една  отделна  нуклеотидна  база от ДНК  с друга  нуклеотидна  база от ДНК . 
Капсид : белтъчната  обвивка , в която  е обвита  вирусна  частица . 
Химикал : вещество  или смес . 
Клонална  експанзия : производството  на много  клетки  от една  отделна  
клетка  (мутант ). 
Образуваща  колония  единица  (cfu) : измерителна  единица  за броя  жизнес­  
пособни  бактерии . 
Конкатемер : дълга  непрекъсната  биомолекула , образувана  чрез конк­  
атенация  на множество  идентични  копия . 
Cos-място : Състоящ  се от 12 нуклеотида  сегмент  от едноверижна  ДНК , 
разположен  в двата  края  на двуверижния  геном  на бактериофаг  ламбда . 
Делеция : мутация , при която  геномът  изгубва  един  или повече  (последов­  
ателни ) нуклеотиди . 
Електропорация : прилагането  на електрически  импулси  за увеличаване  на 
пропускливостта  на клетъчната  мембрана . 
Собствен  ген: ген, който  е присъщ  на генома . 
Свръхдисперсия : вариране  в повтарящите  се очаквания  за част от 
популация , което  е по-голямо , отколкото  очакваното  за популация  с 
биномно  разпределение . 
Мутация  с изместване  на рамката  на разчитане : генна  мутация  в 
рамките  на кодираща  протеин /пептид  ДНК  последователност , причинена  
от инсерции  или делеции  на брой  нуклеотиди , който  не е делим  без 
остатък  на три. 
Инсерция : добавянето  на една  или повече  нуклеотидни  двойки  бази  в ДНК  
последователност . 
Множество  мутанти  от една  мутация  (jackpot) : голям  брой  мутанти , 
които  са възникнали  чрез клонална  експанзия  от една  мутация . 
Големи  делеции : делеции  в ДНК  на повече  от няколко  килобази  (които  се 
откриват  ефективно  с изследвания  със селекция  на Spi  – и с плазмиди , 
съдържащи  lacZ ). 
Лигиране : ковалентно  свързване  на два края  на ДНК  молекула  с 
използване  на ДНК -лигаза . 
Митоген : химикал , който  стимулира  клетка  за започване  на клетъчното  
делене  чрез задействане  на митозата  (т.е. клетъчното  делене ). 
Неутрален  ген: ген, който  не е повлиян  от положителен  или отрицателен  
селекционен  натиск . 
Опаковане : синтез  на инфекциозни  фагови  частици  от смес  от фагов  
капсид , протеини  от опашката  и конкатемер  на фагови  ДНК  молекули . 
Обикновено  се използва  за опаковане  на клонирана  ДНК  в ламбда  вектор  
(отделена  с cos-места ) в инфекциозни  ламбда  частици . 
Ефикасност  на опаковането : ефикасността , с която  опакованите  
бактериофаги  се изолират  в бактерията  гостоприемник . ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 927
 
Образуваща  плака  единица  (pfu) : измерителна  единица  за броя  жизнес­  
пособни  бактериофаги . 
Точкова  мутация : общ термин  за мутация , която  засяга  само  малка  ДНК  
последователност , включително  малки  инсерции , делеции  и замествания  на 
двойка  бази. 
Положителна  селекция : метод , който  позволява  да оцелеят  само  мута­  
нтите . 
Репортерен  ген: ген, чийто  продукт  (ген с мутация ) се открива  лесно . 
Момент  на пробовземане : краят  на периода  от време , предхождащ  
умъртвяването , през който  химикалът  не се прилага , и по време  на който  
нерепарираните  повреди  в ДНК  се фиксират  в стабилни  мутации . 
Вектор  совалка : вектор , устроен  по такъв  начин , че да може  да се 
разпространява  в два гостоприемника  от различен  вид; съответно , 
включена  във вектор  совалка  ДНК  може  да бъде  изпитвана  или манип­  
улирана  в два различни  типа  клетки  или в два различни  организъма . 
Изпитван  химикал : Всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . 
Трансгенен : който  произхожда  от, или е свързан  с, или представлява  орга­  
низъм , чийто  геном  е бил изменен  чрез пренос  на ген или гени  от друг  вид. ▼M5 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 928
 
Част  В: МЕТОДИ  ЗА ОПРЕДЕЛЯНЕТО  НА ЕКОЛОГИЧНА  
ТОКСИЧНОСТ  
СЪДЪРЖАНИЕ  
В.1. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  ЗА РИБА  
В.2. DAPHNIA  SP. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ОСТРА  ИМОБИЛИЗАЦИЯ  
В.3. СЛАДКОВОДНИ  ВОДОРАСЛИ  И ЦИАНОБАКТЕРИИ , 
ИЗПИТВАНЕ  ЗА ПОТИСКАНЕ  НА РАСТЕЖА  
В.4. ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ПРЯКАТА  БИОЛОГИЧНА  РАЗГРА­  
ДИМОСТ  
ЧАСТ  I. ОБЩИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
ЧАСТ  II. ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА DOC ЧРЕЗ  СКОРОСТТА  НА 
ОТМИРАНЕ  (МЕТОД  В.4-А) 
ЧАСТ  III. МОДИФИЦИРАН  СКРИНИНГ  НА ОИСР  (МЕТОД  В.4-Б) 
ЧАСТ  IV. МЕТОД  ЗА ОТДЕЛЯНЕ  НА СО 2 (МЕТОД  В.4-В) 
ЧАСТ  V. ИЗПИТВАНЕ  ЧРЕЗ  МАНОМЕТРИЧНА  РЕСПИРОМЕТРИЯ  
(МЕТОД  В.4-Г) 
ЧАСТ  VI. ИЗПИТВАНЕ  ПО МЕТОДА  НА ИЗОЛИРАНИТЕ  ПРОБИ  
(МЕТОД  В.4-Д) 
ЧАСТ  VII. ИЗПИТВАНЕ  ПО M.I.T.I. ( МЕТОД  В.4-Е) 
В.5. РАЗГРАЖДАНЕ  – БИОХИМИЧНА  ПОТРЕБНОСТ  ОТ 
КИСЛОРОД  
В.6. РАЗГРАЖДАНЕ  – ХИМИЧНА  ПОТРЕБНОСТ  ОТ 
КИСЛОРОД  
В.7. РАЗГРАЖДАНЕ  – АБИОТИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ : 
ХИДРОЛИЗА  КАТО  ФУНКЦИЯ  ОТ PH 
В.8. ТОКСИЧНОСТ  ЗА ЗЕМНИ  ЧЕРВЕИ . 
В.9. БИОЛОГИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ  – ИЗПИТВАНЕ  С 
ИЗКУСТВЕНА  ПОЧВА  
В.10. ИЗПИТВАНЕ  ЗА СИМУЛИРАНЕ  НА АЕРОБНО  
ПРЕЧИСТВАНЕ  НА ОТПАДЪЧНИ  ВОДИ : В.10-А: 
МОДУЛИ  С АКТИВНА  УТАЙКА  — В.10-Б: БИОФИЛМИ  
В.11. БИОЛОГИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ  – ИЗПИТВАНЕ  ЗА 
ПОТИСКАНЕ  ДИШАНЕТО  НА АКТИВИРАНА  УТАЙКА  
В.12. БИОЛОГИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ  – МОДИФИЦИРАНО  SCAS 
ИЗПИТВАНЕ  
В.13 БИОКОНЦЕНТРАЦИЯ : ПРОТОЧЕН  ТЕСТ  ВЪРХУ  РИБИ  
В.14. ТЕСТВАНЕ  РАСТЕЖА  НА МЛАДИТЕ  РИБИ  
В.15. РИБИ , КРАТКОСРОЧЕН  ТЕСТ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ПРИ  
ЕМБРИОНИТЕ  И ИНДИВИДИТЕ  В СТАДИЙ  НА 
ХРАНЕНЕ  ОТ ЖЪЛТЪЧНАТА  ТОРБИЧКА  
В.16. МЕДОНОСНА  ПЧЕЛА  – ТЕСТ  ЗА ОСТРА  ОРАЛНА  
ТОКСИЧНОСТ  
В.17. МЕДОНОСНА  ПЧЕЛА  – ТЕСТ  ЗА ОСТРА  КОНТАКТНА  
ТОКСИЧНОСТ  
В.18. АДСОРБЦИЯ /ДЕСОРБЦИЯ  ЧРЕЗ  ИЗПОЛЗВАНЕ  МЕТОДА  
ЗА РАВНОВЕСИЕ  В ГРУПАТА  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 929
 
В.19. ИЗЧИСЛЯВАНЕ  КОЕФИЦИЕНТА  НА АДСОРБЦИЯ  (К OC ) 
НА ПОЧВАТА  И НА УТАЙКАТА  ОТ ОТПАДНИ  ВОДИ , 
ИЗПОЛЗВАЩИ  ВИСОКОЕФЕКТИВНА  ТЕЧНА  ХРОМАТО­  
ГРАФИЯ  (HPLC) 
В.20. ТЕСТ  ЗА ВЪЗПРОИЗВЕЖДАНЕ  НА ГИГАНТСКА  ВОДНА  
БЪЛХА  
В.21. ПОЧВЕНИ  МИКРООРГАНИЗМИ : ИЗПИТВАНЕ  НА 
АЗОТНАТА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  
В.22. ПОЧВЕНИ  МИКРООРГАНИЗМИ : ИЗПИТВАНЕ  НА ВЪГЛ­  
ЕРОДНАТА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  
В.23. АЕРОБНА  И АНАЕРОБНА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  В ПОЧВИ  
В.24. АЕРОБНА  И АНАЕРОБНА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  ВЪВ  
ВОДНИ  СЕДИМЕНТНИ  СИСТЕМИ  
В.25. АЕРОБНА  МИНЕРАЛИЗАЦИЯ  В ПОВЪРХНОСТНИ  ВОДИ  
— СИМУЛАЦИОННО  ИЗПИТВАНЕ  ЗА БИОРАЗГ­  
РАЖДАНЕ  
В.26. ИЗПИТВАНЕ  ПОТИСКАНЕТО  НА РАСТЕЖА  НА ВИДА  
LEMNA  
▼M4 
В.27. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА ХИРОНОМИДИ  В 
СИСТЕМА  ВОДА –СЕДИМЕНТ  С ИЗПОЛЗВАНЕ  НА 
СЕДИМЕНТ  С ДОБАВКА  
В.28. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА ХИРОНОМИДИ  В 
СИСТЕМА  ВОДА –СЕДИМЕНТ  С ИЗПОЛЗВАНЕ  НА 
ВОДА  С ДОБАВКА  
В.29. ЛЕСНА  БИОРАЗГРАДИМОСТ  — CO  2 В ЗАПЕЧАТАНИ  
СЪДОВЕ  (ИЗПИТВАНЕ  В СВОБОДНОТО  ПРОСТРАНСТВО  
НАД  ТЕЧНОСТТА ) 
В.30. БИОАКУМУЛАЦИЯ  В СУХОЗЕМНИ  ОЛИГОХЕТИ  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 930
 
B.1. ОСТРА  ТОКСИЧНОСТ  ЗА РИБА  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на този тест е да определи  острата  летална  токсичност  на 
вещество  за риба  в прясна  вода . Желателно  е да се разполага , 
доколкото  е възможно , с данни  за разтворимостта  във вода , 
парното  налягане , химическата  устойчивост , дисоциационните  
константи  и биологичното  разграждане  на веществото , за да се 
улесни  изборът  на най-подходящия  метод  за тестване  (статичен , 
полустатичен  или с постоянно  водоподаване ) с оглед  
осигуряването  на достатъчно  постоянни  концентрации  на 
изследваното  вещество  при провеждане  на теста . 
Допълнителната  информация  (например  структурна  формула , 
степен  на пречистеност , естество  и процентно  съдържание  на 
значими  примеси , наличие  и количества  на добавки  и раздел­  
ителен  коефициент  n-octanol/ вода ) следва  да се взема  предвид  
както  при подготовката  на теста , така при интерпретацията  на 
резултатите . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Остра  токсичност  е видимото  вредно  въздействие , причинено  в 
организъм  при излагане  за кратко  време  (дни) на въздействие  на 
вещество . В настоящия  тест острата  токсичност  е изразена  като 
средна  летална  концентрация  (LC  50 ), това е концентрацията  във 
вода , която  умъртвява  50 % от опитното  количество  риба  при 
непрекъснато  излагане  и която  следва  да бъде  посочена . 
Всички  концентрации  на тестваното  вещество  са посочени  в 
тегло  за обем  (милиграми  на литър ). Те могат  да бъдат  
изразени  също  и в тегло  за тегло  (mg.kg  -1 ). 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Референтното  вещество  може  да се тества  като средство  за 
доказване , че в условията  на лабораторен  опит  реакциите  на 
изследваните  видове  не се променят  съществено . 
За този тест не се посочват  вещества  за сравнение . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Може  да се извърши  ограничен  тест със 100 mg/l, за да се 
докаже , че LC  50 е по-голяма  от тази концентрация . 
Рибите  се излагат  на тестваното  вещество , добавяно  във водата  в 
определен  обхват  от концентрации  в продължение  на 96 часа. 
Умъртвените  бройки  се отчитат  на интервали  от поне  24 часа и 
на всеки  наблюдаван  интервал , където  е възможно , се 
изчисляват  концентрациите , умъртвили  50 % от рибите  (LC  50 ). 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Критериите  за качество  се прилагат  както  към ограничения  тест, 
така и към пълния  метод  на изследване . 
Смъртността  при контролните  риби  не следва  да надвишава  
10 % (или не повече  от 1 риба , ако са използвани  по-малко  от 
10 бройки ) до края  на експеримента . 
Концентрацията  на разтворения  кислород  следва  да бъде  над 
60 % от стойността  на въздухонаситеността  на водата  по 
време  на теста . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 931
 
Концентрациите  на тестваното  вещество  следва  да се поддържат  
в рамките  до 80 % от първоначалните  концентрации  в продъ­  
лжение  на целия  експеримент . 
За вещества , които  лесно  се разтварят  в опитната  среда , 
получавайки  по този начин  стабилни  разтвори , т.е. такива , 
които  няма , в известен  значителен  размер , да се изпарят , 
разложат , хидролизират  или адсорбират , първоначалната  конце­  
нтрация  може  да бъде  приета  за равна  на номиналната  конце­  
нтрация . Следва  да се представят  доказателства , че през периода  
на теста  концентрациите  са били  поддържани  постоянни  и че 
критериите  за качество  са били  спазени . 
За вещества , които  са: 
i) слабо  разтворими  в опитната  среда , или 
ii) способни  да образуват  стабилни  емулсии  или дисперсии , или 
iii) нестабилни  във водни  разтвори , 
като първоначална  концентрация  се приема  измерената  конце­  
нтрация  в разтвора  (или, ако е технически  невъзможно , във 
водна  колона ) в началото  на теста . Концентрацията  се 
определя  след  период  на равновесие , но преди  въвеждането  на 
опитната  риба . 
Във всеки  от тези случаи  следва  да се извършва  последващо  
измерване , за да се потвърдят  конкретните  концентрации  на 
излагане  или изпълнението  на качествените  критерии . 
рН не следва  да варира  с повече  от 1 единица . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Могат  да се използват  3 вида  процедури : 
Статичен  тест : 
Това  е тест за токсичност , при който  не се добавя  от опитния  
разтвор . (Разтворите  остават  непроменени  през целия  период  на 
теста .) 
Полустатичен  тест : 
Това  е тест без добавяне  от опитния  разтвор , но при равномерно  
подновяване  на целия  опитен  разтвор  след  продължителни  
периоди  от време  (например  24 часа). 
Постоянно  водоподаване : 
Това  е тест за токсичност , при който  водата  се обновява  
постоянно  в опитните  камери , а химическото  вещество , което  
се изследва , се пренася  с използваната  вода  за подновяване  на 
опитната  среда . 
1.6.1.  Химически  реактиви  
1.6.1.1.  Разтвори  на опитните  вещества  
Стандартни  разтвори  с необходимата  сила  се приготвят  чрез 
разтваряне  на веществото  в дейонизирана  вода  или във вода  
съгласно  описанието  в т. 1.6.1.2.  
Избраните  опитни  концентрации  се приготвят  чрез разреждане  
на стандартния  разтвор . Ако се тестват  високи  концентрации , 
веществото  може  да бъде  разтворено  директно  във водата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 932
 
Обикновено  веществата  се изследват  само  до границата  на разт­  
воримост . За някои  вещества  (например  вещества  с ниска  разт­  
воримост  във вода , или висок  P ow , или тези, които  образуват  по- 
скоро  стабилна  дисперсия , отколкото  истински  разтвор  във вода ) 
се допуска  опитната  концентрация  да бъде  над границата  на 
разтворимост  за веществото , за да се гарантира , че е получено  
максималното  съотношение  между  разтворимост  и стабилна  
концентрация . Важно  е обаче  тази концентрация  по никакъв  
начин  да не нарушава  опитната  система  (например  появата  на 
филм  на водната  повърхност , пречейки  за окисляването  на 
водата , и т.н.). 
Ултразвукова  дисперсия , органични  разтворители , емулгатори  
или дисперсанти  могат  да се използват  като помощни  
съединения  за приготвяне  на стандартни  разтвори  на вещества  
с ниска  водоразтворимост  или да спомагат  за разпръскването  на 
тези вещества  в опитната  среда . Когато  се използват  такива  
спомагателни  вещества , всички  опитни  концентрации  следва  да 
съдържат  еднакво  количество  от спомагателните  вещества  и 
допълнителните  бройки  контролна  риба  да бъдат  изложени  на 
същата  концентрация  от спомагателното  вещество , каквато  се 
използва  в опитните  серии . Концентрацията  на такива  
помощни  съединения  следва  да бъде  сведена  до минимум , но 
в никакъв  случай  не следва  да надвишава  100 mg/l в опитната  
среда . 
Тестът  се провежда  без регулиране  на рН. Ако се появят  
симптоми  за настъпили  промени  в рН, препоръчва  се тестът  
да бъде  повторен  с регулиране  на рН и резултатите  да се 
отбележат . В този случай  стойността  на рН на стандартния  
разтвор  следва  да се нагласи  към стойността  на рН на водата  
за разреждане , освен  ако няма  специфични  причини  това да не 
се направи . Предпочитани  за целта  са HCl и NaOH. Това  
регулиране  на рН следва  да се извърши  така, че концентрацията  
на опитното  вещество  в стандартния  разтвор  да не се промени  в 
значителна  степен . Ако в резултат  от регулацията  на рН настъпи  
някаква  химическа  реакция  или при опитното  вещество  протече  
физическо  утаяване , това също  следва  да се отбележи . 
1.6.1.2.  Съхранение  и разреждане  на водата  
Може  да се използва  питейна  вода  от водопровода  (незамърсена  
от потенциално  вредните  концентрации  на хлор , тежки  метали  
или други  вещества ), доброкачествена  природна  вода  или 
пречистена /дестилирана  вода  (вж. допълнение  1). Предпочитат  
се води  с обща  твърдост  между  10 и 250 mg/l ( като СаСО  3 ) и 
с рН от 6,0 до 8,5.  
1.6.2.  Апаратура  
Всички  уреди  следва  да бъдат  изработени  от химически  инертен  
материал . 
— автоматична  система  за разреждане  (за теста  с постоянно  
водоподаване ); 
— измервател  на кислород ; 
— уред  за определяне  твърдостта  на водата ; 
— подходяща  апаратура  за температурен  контрол ; 
— рН-метър . 
1.6.3.  Опитна  риба  
Рибите  следва  да са в добро  здраве  и да нямат  никакви  
малформации . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 933
 
Използаните  видове  следва  да се подбират  въз основа  на практ­  
ически  критерии , каквито  са постоянно  наличие  в течение  на 
годината , лесно  отглеждане , подходящи  (удобни ) за тестване , 
относителна  чувствителност  към химикали , както  и към 
всякакви  икономически , биологически  или екологични  
фактори , които  съществуват . Необходимостта  от сравняемост  
на получените  данни  и съществуващата  международна  
хармонизация  (препратка  1) следва  също  да бъдат  взети  
предвид  при избора  на вида  риба . 
Списък  на видовете  риба , които  са препоръчителни  за изпъ­  
лнението  на този тест, е представен  в допълнение  2; най-предп­  
очитаните  видове  са рибка -зебра  и дъгова  пъстърва . 
1.6.3.1.  Отглеждане  
За предпочитане  е опитните  риби  да бъдат  от една  доставка , с 
еднаква  големина  и възраст . Те следва  да се отглеждат  най- 
малко  12 дни при следните  условия : 
натоварване : 
подходящо  за системата  (рециркулация  или постоянно  водо­  
подаване ) и за видовете  риба ; 
вода : 
вж. 1.6.1.2.;  
светлина : 
осветление  в продължение  на 12 — 16 часа/дневно ; 
концентрация  на разтворения  кислород : 
най-малко  80 % от стойността  на въздухонаситеността  на 
водата ; 
хранене : 
3 пъти  седмично  или дневно , преустановява  се 24 часа преди  
стартиране  на теста . 
1.6.3.2.  Смъртност  
След  48 часа от началото  на периода , смъртността  се отчита  
както  следва : 
— над 10 % от популацията  след  7 дни: 
отстранява  се цялата  партида ; 
— между  5 и 10 % от популацията : 
периодът  на отглеждане  се продължава  с още 7 дни. 
Ако повече  умъртвени  индивиди  не се намерят , партидата  се 
одобрява  (приема ), в противен  случай  следва  да бъде  
отстранена ; 
— под 5 % от популацията : 
цялата  партида  се одобрява . 
1.6.4.  Адаптация  
Рибите  следва  да бъдат  поставени  във вода  с качеството  и 
температурата , които  ще се използват  за теста , най-малко  7 
дни преди  да бъдат  използвани . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 934
 
1.6.5.  Процедура  на теста  
Дефинитивният  тест се предхожда  от тест за определяне  на 
обхвата , от който  да се получи  информация  за диапазона  на 
концентрациите , които  ще се използват  в основния  експеримент . 
Извършва  се един  контролен  тест без опитното  вещество  и, ако 
е уместно , се провежда  и един  контролен  тест със спомагат­  
елното  вещество , в допълнение  към опитните  серии . 
В зависимост  от физическите  и химическите  свойства  на 
опитното  вещество  следва  да се избере  подходящата  за теста  
процедура : статичен  тест, полустатичен  тест или с постоянно  
водоподаване , за да бъдат  спазени  критериите  за качество . 
Рибите  се излагат  на въздействие  на веществото , както  е 
описано  по-долу : 
— продължителност : 96 часа; 
— брой  на животните : поне  7 на концентрация ; 
— съдове : с подходящ  капацитет  в зависимост  от препоръчит­  
елното  натоварване ; 
— натоварване : препоръчва  се максимално  натоварване  от 1 g/l 
за статичните  и полустатичните  тестове , а за тези с 
постоянно  водоподаване  се допуска  по-голямо  натоварване ; 
— опитна  концентрация : най-малко  5 концентрации , разл­  
ичаващи  се една  от друга  чрез постоянен  фактор , 
ненадвишаващ  2,2, и доколкото  е възможно , разширяване  
на обхвата  от 0 до 100 % смъртност ; 
— вода : вж. 1.6.1.2.;  
— светлина : осветление  в продължение  на 12 — 16 часа/­ 
дневно ; 
— температура : подходяща  за вида  на рибата  (допълнение  2), 
но с допустимото  отклонение  от ± 1  o С за всеки  отделен  
тест; 
— концентрация  на разтворения  кислород : не по-малко  от 
60 % от стойността  на въздухонаситеността  на водата  при 
избраната  температура ; 
— хранене : никакво . 
Рибите  се наблюдават  след  първите  2 до 4 часа и поне  на 
интервали  от 24 часа. Рибите  се смятат  за умрели , ако при 
допир  на опашатите  крачета  няма  никаква  реакция  и никакви  
признаци  на дишане  не са видими . Мъртвите  риби  се 
отстраняват  след  оглед  и смъртните  случаи  се записват . 
Записват  се и видимото  ненормално  поведение  (например  
загуба  на равновесие , промени  в начина  на плуване , дихателната  
функция , пигментацията  и др.). 
Ежедневно  се извършват  измервания  на рН, разтворения  
кислород  и температурата . 
Ограничен  тест  
Използвайки  описаните  за този метод  процедури , може  да бъде  
извършен  ограничен  тест с натоварване  100 mg/l, за да се 
докаже , че LC  50 е по-висока  от тази концентрация . 
Ако естеството  на веществото  е такова , че концентрация  
от 100 mg/l в опитната  вода  не може  да бъде  постигната , 
следва  да се извърши  ограничен  тест при концентрация , равна  
на разтворимостта  на веществото  (или максималната  конце­  
нтрация , формираща  стабилна  дисперсия ) в използваната  среда  
(вж. също  1.6.1.1).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 935
 
Ограниченият  тест следва  да се извърши  със 7 до 10 риби , със 
същия  брой  на контролните  риби . (Според  биномната  теория , 
когато  са използвани  10 риби  и е регистрирана  нулева  
смъртност , това е 99,9-процентово  доказателство , че LC  50 е 
по-голяма  от използваната  концентрация  в ограничения  тест. 
При 7, 8 или 9 риби  липсата  на смъртност  е поне  99-процентово  
доказателство , че LC  50 е по-голяма  в сравнение  с използваната  
концентрация .) 
В случай  на смъртност  следва  да се извърши  пълно  проучване . 
Ако се наблюдават  почти  смъртоносни  въздействия , те следва  да 
бъдат  отбелязани . 
2. ДАННИ  И ОЦЕНКА  
За всеки  отчетен  интервал  (24, 48, 72 и 96 часа) се построява  
зависимост  на процентната  смъртност  за всеки  препоръчителен  
период  на излагане  спрямо  стойностите  на концентрация  върху  
логаритмична  хартия . 
При възможност  за всеки  отчетен  интервал  LC  50 и границите  на 
точност  (р = 0,05) следва  да бъдат  отчетени  при използване  на 
стандартните  процедури ; тези стойности  следва  да се 
закръгляват  до един  или най-много  два знака  (ето примери  за 
закръгляване : 173,5 на 170; 0,127 на 0,13; 1,21 на 1,2).  
В случаи , когато  наклонът  на кривата  от съотношението  
концентрация /процентна  смъртност  е прекалено  стръмен  и 
изчисляването  на LC  50 е затруднено , достатъчна  е само  
оценката  на стойността  по графиката . 
Когато  две концентрации  при съотношение  2,2 дават  показания  
за смъртност  само  0 и 100 %, тези две стойности  са достатъчни  
за отчитане  на обхвата , в който  попада  LC  50 . 
Ако е забелязано , че стабилността  или хомогенността  на 
опитното  вещество  не може  да се поддържа , това следва  да 
бъде  записано  в доклада  и да се внимава  при интерпретацията  
на резултатите . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
Протоколът  от изпитването  следва , при възможност , да включва  
следната  информация : 
— данни  за опитната  риба  (научно  наименование , вид (род), 
доставчик , някакво  предварително  третиране , размери  и 
брой  на използваните  индивиди  за всяка  опитна  конце­  
нтрация ); 
— източник  на водата  за разреждане  и нейните  основни  
химически  характеристики  (рН, твърдост , температура ); 
— в случаи , когато  веществото  е с ниска  разтворимост  във 
вода , да се посочват  методите  за приготвяне  на стандартните  
и тестовите  разтвори ; 
— концентрация  на използваните  спомагателни  съединения ; 
— списък  на използваните  концентрации  и всяка  налична  
информация  за стабилността  в концентрациите  на опитния  
химикал  и тестовия  разтвор ; 
— ако са извършени  химически  анализи , да се посочат  
използваните  методи  и получените  резултати ; 
— резултати  от ограничения  тест, ако е извършен ; 
— обосновка  за избора  и подробности  за използваната  опитна  
процедура  (например  статичен  или полустатичен  метод , 
норма  на дозите , скорост  на водоподаване  и аериране  
на водата , ако е приложено  такова , натоварване  на рибата  
и др.); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 936
 
— описание  на опитната  апаратура ; 
— режим  на осветление ; 
— концентрации  на разтворения  кислород , стойности  на рН и 
температурите  на тестовите  разтвори  на всеки  24 часа; 
— доказателства , че критериите  за качество  са спазени ; 
— таблица , показваща  натрупаната  смъртност  при всяка  конце­  
нтрация  и контролните  риби  (и контролни  риби  със спомаг­  
ателни  вещества , ако се налага ) на всеки  от препоръчит­  
елните  интервали  за наблюдение ; 
— графика  на съотношението  концентрация /процентна  
смъртност  в края  на теста ; 
— при възможност , стойностите  на LC  50 на всеки  от препоръч­  
ителните  интервали  за наблюдение  (при 95 % допустима  
точност ); 
— използвани  статистически  процедури  при определяне  стой­  
ностите  на LC  50 ; 
— ако е използвано  референтно  вещество , посочват  се 
получените  резултати ; 
— най-високата  опитна  концентрация , при която  не е настъпила  
смъртност  през периода  на теста ; 
— най-ниската  опитна  концентрация , при която  е отчетена  100- 
процентова  смъртност  по време  на теста . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ОECD, Paris, 1981, Test Guideline 203, Decision of the 
Council C(81) 30 final and updates.  
(2) AFNOR – Determination of the acute toxicity of a substance to  
Brachydanio rerio -  Static and Flow Through methods -NFT 
90-303 June 1985.  
(3) AFNOR- Determination of the acute toxicity of a substance to  
Salmo gairdneri -  Static and Flow – Through methods -NFT 
90-305 June 1985.  
(4) ISO 7346/1,/2 and/3 – Water Quality – Determination of the 
acute lethal toxicity of substances to a fresh water fish  (Brac­
hydanio rerio  Hamilton-Buchanan – Teleostei, Cyprinidae). 
Part 1: Static method. Part 2: Semi-static method. Part 3: Flow-through method.
 
(5) Eidgenössisches Department des Innern, Schweiz: Richtlinien 
fur Probenahme und Normung von Wasseruntersuchun ­
gsmethoden – Part II 1974.  
(6) DIN Testverfahren mit Wasserorganismen, 38 412 (11) und 1 
(15).  
(7) JIS K 0102, Acute toxicity test for fish.  
(8) NEN 6506 – Water – Bepaling van de akute toxiciteit met 
behulp van  Poecilia reticulata,  1980.  
(9) Environmental Protection Agency, Methods for the acute 
toxicity tests with fish, macroinvertebrates and amphibians. The Committee on Methods for Toxicity Tests with Aquatic 
Organisms, Ecological Research Series EPA-660-75-009, 
1975.
 
(10) Environmental Protection Agency, Environmental monitoring 
and support laboratory, Office of Research and Development, 
EPA-600/4 -78-012, January 1978.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 937
 
(11) Environmental Protection Agency, Toxic Substance Control, 
Part IV, 16 March 1979.  
(12) Standard methods for the examination of water and waste ­
water, fourteen edition, APHA-AWWA-WPCF, 1975.  
(13) Commission of the European Communities, Inter-laboratory 
test programme concerning the study of the ecotoxicity of a 
chemical substance with respect to the fish. EEC Study 
D.8368, 22 March 1979.  
(14) Verfahrensvorschlag des Umweltbundesamtes zum akuten 
Fisch-Test. Rudolph, P. und Boje, R., Ökotoxikologie, Grun ­
dlagen fur die ökotoxikologische Bewertung von Umweltche ­
mikalien nach dem Chemikaliengesetz, ecomed 1986.  
(15) Litchfield, J. T. and Wilcoxon, F., A simplified method for 
evaluating dose effects experiments, J. Pharm, tExp. Therap., 
1949, vol. 96, 99.  
(16) Finney, D. J. Statistical Methods in Biological Assay. Griffin, 
Weycombe, U. K., 1978.  
(17) Sprague, J. B. Measurement of pollutant toxicity to fish. 
Bioassay methods for acute toxicity. Water Res., 1969, vol. 
3, 793-821.  
(18) Sprague, J. B. Measurement of pollutant toxicity to fish. II 
Utilising and applying bioassay results. Water Res. 1970, vol. 4, 3-32.
 
(19) Stephan, C. E. Methods for calculating an LC  50 . In Aquatic 
Toxicology and Hazard Evaluation (edited by F.I. Mayer and J.L. Hamelink). American Society for Testing and Materials, ASTM STP 634, 1977, 65-84.
 
(20) Stephan, C. E., Busch, K. A., Smith, R., Burke, J. and 
Andrews, R. W. A computer program for calculating an 
LC 50 . US EPA.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 938
 
Допълнение  1 
Пречистена  вода  
Пример  за подходяща  вода  за разреждане  
Всички  химикали  следва  да са с качество  „чист  за анализ “. 
Използва  се дестилирана  вода  с добро  качество  или дейонизирана  вода  с 
проводимост  под 5 μЅсm -1 . 
Апаратурата  за дестилиране  на вода  не следва  да съдържа  части , изработени  
от мед. 
Стандартни  разтвори  
СаСl 2 .2Н 2 О (калциев  хлорид  дихидрат ) 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър . 11,76 g 
MgSO  4 .7H  2 O (магнезиев  сулфат  хептахидрат ) 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър . 4,93 g 
NaHCO  3 (натриев  бикарбонат ) 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър . 2,59 g 
KCl (калиев  хлорид ) 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър . 0,23 g  
Пречистена  вода  за разреждане  
Смесват  се по 25 ml от всеки  от 4-те стандартни  разтвора  и се долива  до 1 
литър . 
Аерира  се, докато  концентрацията  на разтворения  кислород  се изравни  със 
стойността  на въздухонаситеността  на водата . 
рН следва  да бъде  7,8 ± 0,2.  
При необходимост  рН се нагласява  към това на NaOH (натриев  хидроксид ) 
или на HCL (солна  киселина ). 
Така  приготвената  вода  за разреждане  се оставя  да престои  12 часа и не 
следва  повече  да се аерира . 
Сумата  от калциевите  и магнезиевите  йони  в този разтвор  е 2,5 mmol/l. 
Съотношението  на Ca:Mg йони  е 4:1, а на Na:K йони  — 10:1. Общата  
алкалност  на разтвора  е 0,8 mmol/l.  
Евентуалните  отклонения  при приготвяне  на водата  за разреждане  не следва  
да водят  до промени  в състава  или свойствата  на водата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 939
 
Допълнение  2 
Препоръчителни  видове  риба  за провеждане  на изпитванията  
Препоръчани  видове  Препоръчан  
обхват  на 
температурата  за 
изпитване  ( o С) Препоръчана  
обща  дължина  на 
експеримент­  
алното  животно  
(cm) 
Brachydanio rerio (Teleostei, Cyprinidae)  
(Hamilton-Buchanan) Рибка -зебра  От 20 до 24 3,0 ± 0,5  
Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae)  
(Rafinesque) Бодливка  От 20 до 24 5,0 ± 2,5  
Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae)  
(Linneaus 1758) Обикновен  шаран  От 20 до 24 6,0 ± 2,0  
Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae)  
Cyprinodontidae (Tomminck and Schlege 1850) Оризиа  От 20 до 24 3,0 ± 1,0  
Poecilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae)  
(Peters 1859) Гупи  От 20 до 24 3,0 ± 1,0  
Lepomis macrochirus  (Teleostei, Centrar ­
chidae ) (Rafinesque Linneaus 1758) Дребна  
сладководна  риба  От 20 до 24 5,0 ± 2,0 
Onchorhynchus mykiss ( Teleostei, Salmo ­
nidae ) (Walbaum 1988) Дъгова  пъстърва  От 12 до 17 6,0 ± 2,0  
Leuciscus idus (Teleostei, Cyprinidae)  
(Linneaus 1758) Златна  рибка  От 20 до 24 6,0 ± 2,0
 
Събиране  
Изброените  по-горе риби  са лесни  за отглеждане  и/или лесни  за намиране  
през цялата  година . Те могат  да се развъждат  и култивират  в рибни  ферми  
или в лаборатория , при условия  на контрол  за болести  и паразити , така че 
експерименталните  животни  да бъдат  здрави  и с известен  произход . Тези  
риби  се намират  в много  части  на света . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 940
 
Допълнение  3 
Пример  за зависимостта  концентрация : процент  смъртност  
Пример  за определяне  на LC  50 , използвайки  логаритмични  координати .
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 941
 
В.2. DAPHNIA  SP. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ОСТРА  ИМОБИЛИЗАЦИЯ  
1. МЕТОД  
Този  метод  за остра  имобилизация  е еквивалентен  на OECD 
TG 202 (2004).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  описва  изпитване  за остра  токсичност  за оценка  
на въздействието  на химични  вещества  върху  дафнии . 
Използвани  са, доколкото  е възможно , съществуващи  методи  
на изпитване  (1)(2)(3).  
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
В контекста  на този метод  са използвани  следните  определения : 
ЕС 50 : е концентрацията , която  имобилизира  50 % от дафниите  в 
рамките  на определен  период  на излагане . Ако се използва  
друго  определение , то следва  да е цитирано  заедно  с препратка . 
Имобилизация : Животните , които  не са в състояние  да плуват  
до 15 секунди  след  лекото  разклащане  на съда  на изпитване , се 
смятат  за имобилизирани  (дори  ако все още да могат  да движат  
антените  си). 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Млади  дафнии , на възраст  по-малка  от 24 часа в началото  на 
изпитването , се излагат  на изпитваното  вещество  при редица  
концентрации  за период  от 48 часа. Имобилизацията  се 
записва  на 24-ия и 48-ия час и се сравнява  с контролните  стой­  
ности . Резултатите  се анализират , за да се изчисли  ЕС 50 на 48-ия 
час (вж. точка  1.2 за определенията ). Определянето  на ЕС 50 на 
24-ия час е по избор . 
1.4. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Разтворимостта  във вода  и налягането  на парите  на изпитваното  
вещество  следва  да са известни  и следва  да има надежден  анал­  
итичен  метод  за количествено  определяне  на веществото  в разт­  
ворите  на изпитване , като ефикасността  на събиране  е известна , 
както  и границата  на определяне . Полезна  е информацията  за 
структурната  формула , чистотата  на веществото , стабилността  
му във вода  или на светлина , P ow и резултатите  от изпитването  
за лесна  биоразградимост  (вж. метод  В.4). 
Забележка : Насоки  за изпитване  на вещества  с физикохимични  
свойства , които  ги правят  трудни  за изпитване , са дадени  в (4). 
1.5. РЕФЕРЕНТНИ  ВЕЩЕСТВА  
Референтно  вещество  може  да се изпита  за ЕС 50 като 
средство  за потвърждение , че условията  на изпитване  са 
надеждни . Токсикантите , които  са използвани  в международен  
ринг -тест (1)(5), са препоръчителни  за тази цел ( 1 ). Препоръчва  
се изпитването  или изпитванията  с референтни  вещества  да се 
правят  всеки  месец  или поне  два пъти  в годината . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 942  
( 1 ) Резултатите  от тези междулабораторни  изпитвания  и техническата  поправка  към 
ISO 6341 определят  EC  50 — 24 h на калиев  дихромат  (K  2 Сr 2 О 7 ) в границите  от 0,6 
mg/1 до 1,7 mg/1.
 1.6. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
За да бъде  едно  изпитване  валидно , показателите  му следва  да 
отговарят  на следните  критерии : 
— при контролите , включително  контролите , съдържащи  
разтварящия  агент , не бива  да се имобилизарат  повече  от 
10 % от дафниите ; 
— концентрацията  на разтворения  кислород  в края  на 
изпитването  следва  да бъде  ≥ 3 mg/l в контролите  съдове  и 
съдовете  за провеждане  на изпитването . 
Забележка : За първия  критерий  не повече  от 10 % от 
контролните  дафнии  следва  да показват  имобилизация  или 
други  признаци  на заболяване  или стрес , например : обезцв­  
етяване , необичайно  поведение , примерно  невъзможност  да се 
откъсне  от водна  повърхност . 
1.7. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.7.1.  Оборудване  
Съдовете  за изпитване  и другото  оборудване , което  ще влезе  в 
контакт  с изпитваните  разтвори , следва  да бъдат  изцяло  
стъклени  или от друг  химически  инертен  материал . Съдовете  
за изпитване  обикновено  са стъклени  епруветки  или колби ; те 
следва  да бъдат  почистени  преди  всяка  употреба  по стандартни  
лабораторни  процедури . Съдовете  за изпитване  следва  да бъдат  
свободно  покрити , за да се намали  загубата  на вода  поради  
изпаряване  и за да се избегне  попадането  на прах  в разтворите . 
Летливите  вещества  следва  да се изпитват  при изцяло  пълни  
затворени  съдове , които  да са достатъчно  големи , за да може  
да се попречи  на кислорода  да стане  лимитиращ  фактор  или 
съдържанието  му да стане  твърде  ниско  (вж. точка  1.6 и 
първи  параграф  от точка  1.8.3).  
Освен  това се използва  напълно  или отчасти  следното  
оборудване : кислородометър  (с микроелектрод  или друго  
подходящо  оборудване  за измерване  на разтворения  кислород  
в проби  с малък  обем ); рН-метър ; подходящ  прибор  за 
контрол  на температурата ; оборудване  за определяне  на 
общата  концентрация  на органичен  въглерод  (ТОС ); оборудване  
за определяне  на химично  потребния  кислород  (COD); апарат  за 
определяне  на твърдостта  на вода  и т.н. 
1.7.2.  Организъм  на изпитване  
Daphnia magna  Straus е предпочитаният  вид, макар  че други  
видове  Daphnia  също  могат  да бъдат  използвани  за това 
изпитване  (например  Daphnia pulex).  В началото  на изпитването  
животните  следва  да бъдат  на възраст  не по-голяма  от 24 часа и 
за да се намали  вариабилността , силно  се препоръчва  те да не са 
от едно  и също  първо  потомство . Те следва  да са от една  здрава  
популация  (т.е. такава , която  не проявява  признаци  на стрес , 
като висока  смъртност , наличие  на мъжки  и ефипии , забавяне  
в създаването  на първото  поколение , обезцветени  животни  и 
т.н.). Всички  организми , които  се използват  за дадено  изпитване , 
следва  да са произлезли  от култури , създадени  от дафнии  от 
една  и съща  популация . Популацията  животни  следва  да се 
държи  в култура  с условия  (светлина , температура , среда ), 
сходни  с тези, които  ще се използват  по време  на изпитването . 
Ако средата  на културата  дафнии , която  ще се използва  по 
време  на изпитването , се различава  от средата , която  се 
използва  при рутинни  култури  дафнии , добра  практика  е да се 
предвиди  предварителен  период  за аклиматизация  преди  
изпитването . Затова  младите  дафнии  следва  да се държат  във 
вода  за разреждане  при температурата  на изпитване  поне  48 
часа преди  началото  на изпитването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 943
 
1.7.3.  Вода  за аклиматизиране  и вода  за разреждане  
Природни  води  (повърхностни  или подпочвени ), реконст­  
итуирана  вода  или дехлорирана  чешмяна  вода  могат  да се 
използват  за аклиматизиране  и за разреждане , ако дафниите  
оцеляват  в нея за времето  на отглеждане  на културата , аклим­  
атизацията  и изпитването , без да показват  признаци  на стрес . 
Всяка  вода , която  отговаря  на химичните  характеристики  на 
вода , приемлива  за разреждане , както  са изброени  в 
приложение  1, е подходяща  да се използва  като вода  за 
изпитването . Тя следва  да е с постоянно  качество  през пялото  
време  на изпитването . Реконституирана  вода  може  да се получи , 
като се добавят  специфични  количества  реагенти  от категория , 
призната  за провеждане  на опити , към дейонизирана  или дест­  
илирана  вода . Примери  за реконституирана  вода  са дадени  в (1), 
(6) и в приложение  2. Забележете , че средите , съдържащи  
познати  агенти , образуващи  челати , като средите  М4 и М7 в 
приложение  2, следва  да се избягват  при вещества  на изпитване , 
съдържащи  метал . рН следва  да бъде  в границите  от 6 до 9. 
Твърдост  между  40 и 250 mg/l ( изразена  като СаСО  3 ) е 
препоръчителна  за Daphnia Magna,  докато  по-ниска  твърдост  
може  също  да бъде  подходяща  за други  видове  Daphnia.  
Водата  за разреждане  може  да се аерира  преди  употреба  за 
изпитването , така че концентрацията  на разтворения  кислород  
да достигне  насищане . 
Ако се използва  природна  вода , качествените  ѝ параметри  
следва  да се измерват  поне  два пъти  годишно  или всеки  път 
когато  има подозрение , че тези характеристики  може  да са се 
променили  значително  (вж. предишната  точка  и приложение  1). 
Следва  да се измери  и съдържанието  на тежките  метали  
(например  Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni). Ако се използва  
дехлрорирана  чешмяна  вода , желателно  е ежедневно  да се 
прави  хлорен  анализ . Ако водата  за разреждане  е от 
повърхностен  или подпочвен  водоизточник , следва  да се 
измерят  проводимостта  и общият  органичен  въглерод  (ТОС ) 
или химично  потребният  кислород  (COD).  
1.7.4.  Разтвори  на изпитване  
Разтворите  на изпитване  с избраните  концентрации  обикновено  
се приготвят  чрез разреждане  на изходен  разтвор . За предп­  
очитане  е изходните  разтвори  да се приготвят , като се 
разтвори  изпитваното  вещество  във водата  за разреждане . 
Доколкото  е възможно , следва  да се избягва  използването  на 
разтворители , емулгатори  или дисперсанти . Въпреки  това, в 
някои  случаи  може  да се налага  използването  на подобни  
съединения , за да се получи  подходящо  концентриран  изходен  
разтвор . Насоки  за подходящи  разтворители , емулгатори  и 
дисперсанти  са дадени  в (4). Във всички  случаи  обаче  
изпитваните  вещества  в разтворите  на изпитване  не следва  да 
превишават  границата  на разтворимост  във водата  за 
разреждане . 
Изпитването  следва  да се проведе  без коригиране  на рН. Ако рН 
не остане  в границите  6—9, може  да се наложи  провеждането  на 
второ  изпитване , при което  рН на изходния  разтвор  се коригира , 
за да стане  еднакъв  с този на водата  за разреждане  преди  доба­  
вянето  на изпитваното  вещество . Корекцията  на рН следва  да се 
направи  по такъв  начин , че концентрацията  на изходния  разтвор  
да не се промени  в значителна  степен  и да не се предизвика  
никаква  химична  реакция  или утаяване  на изпитваното  
вещество . За предпочитане  са НСl и NaOH.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 944
 
1.8. ПРОЦЕДУРА  
1.8.1.  Условия  на излагане  
1.8.1.1.  Групи  на изпитване  и контроли  
Съдовете  за изпитването  се пълнят  с подходящи  обеми  вода  за 
разреждане  и разтвори  на изпитваното  вещество . Съотнош­  
ението  въздух /вода  в съда  следва  да бъде  еднакво  за изпитваната  
и контролната  група . Тогава  в съдовете  за изпитване  се поставят  
дафниите . Поне  20 животни , за предпочитане  разделени  на 
четири  групи  по пет животни  всяка , следва  да се използват  за 
всяка  изпитвана  концентрация  и за контролите . Поне  2 ml от 
разтвора  на изпитване  следва  да се осигури  за всяко  животно  
(т.е. обем  от 10 ml за пет дафнии  на съд за изпитване ). 
Изпитването  може  да се осъществи , като се прави  полустатично  
обновяване  или се използва  проточна  система , когато  конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  не е стабилна . 
Една  контролна  серия  с вода  за разреждане  и също , ако е необ­  
ходимо , една  контролна  серия , съдържаща  разтварящия  агент , 
следва  да се изпитат  в допълнение  към обработените  серии . 
1.8.1.2.  Концентрации  на изпитване  
Може  да се направи  изпитване  за определяне  на обхвата , за да 
се определят  концентрациите  за същинските  изпитвания , освен  
ако няма  налична  информация  за токсичността  на изпитваното  
вещество . За тази цел дафниите  се излагат  на серия  от много  
раздалечени  концентрации  на изпитваното  вещество . Пет 
дафнии  следва  да се изложат  на всяка  една  концентрация  на 
изпитване  за период  от 48 часа или по-малко , като не са необ­  
ходими  репликати . Периодът  на излагане  може  да бъде  скъсен  
(например  24 часа и по-малко ), ако данните , подходящи  за целта  
на изпитването  за определяне  на обхвата , могат  да се получат  за 
по-кратко  време . 
Необходимо  е да се използват  поне  пет концентрации  на 
изпитване . Те следва  да образуват  геометрична  прогресия  с 
частно , за предпочитане  не превишаващо  2,2. Следва  да се 
направи  обосновка , ако се използват  по-малко  от пет конце­  
нтрации . Най-високата  изпитана  концентрация  е добре  да води  
до 100-процентна  имобилизация , а най-ниската  изпитана  конце­  
нтрация  да не предизвиква  никакъв  видим  ефект . 
1.8.1.3.  Инкубационни  условия  
Температурата  следва  да бъде  в обхвата  от 18 до 22  o С, а за 
всяко  единично  изпитване  тя следва  да бъде  постоянна  в 
границите  ± 1  o С. Препоръчва  се цикъл  от 16 часа на светло  и 
8 часа на тъмно . Приема  се също  и пълна  тъмнина , особено  за 
изпитвани  вещества , които  са нестабилни  на светлина . 
Съдовете  за изпитванията  не следва  да се аерират  по време  на 
изпитването . Изпитването  следва  да се проведе  без коригиране  
на рН. Дафниите  не бива  да се хранят  по време  на изпитването . 
1.8.1.4.  Продължителност  
Изпитването  продължава  48 часа. 
1.8.2.  Наблюдения  
Всеки  съд за изпитване  следва  да бъде  проверяван  за имоб­  
илизирани  дафнии  на 24-ия и 48-ия час след  началото  на 
изпитването  (вж. точка  1.2 за дефинициите ). Освен  неподвиж­  
ността  следва  да се докладва  всяко  анормално  поведение  или 
такъв  външен  вид. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 945
 
1.8.3.  Аналитични  измервания  
Разтвореният  кислород  и рН се измерват  в началото  и в края  на 
изпитването  в контролата /контролите  и при най-високата  конце­  
нтрация  на изпитваното  вещество . Концентрацията  на разт­  
ворения  кислород  при контролите  следва  да съответства  на 
критериите  за валидност  (вж. точка  1.6). рН нормално  не 
следва  да варира  с повече  от 1,5 единици  за което  и да е 
изпитване . Температурата  обикновено  се измерва  в контролните  
съдове  или в околния  въздух  и следва  да се регистрира , 
препоръчително  е непрекъснато , през пялото  време  на 
изпитването  или като минимум  — в началото  и в края  на 
изпитването . 
Концентрацията  на изпитваното  вещество  следва  да се измерва  
като минимум  в най-високата  и най-ниската  концентрация  на 
изпитване , в началото  и в края  на изпитването  (4). Препоръч­  
ително  е резултатите  да се основават  върху  измерените  конце­  
нтрации . Въпреки  това, ако има данни , които  показват , че 
концентрацията  на изпитваното  вещество  се поддържа  дост­  
атъчно  добре  в рамките  на ± 20 % от номиналната  или първон­  
ачалната  измерена  концентрация  през пялата  продължителност  
на изпитването , то резултатите  могат  да се основат  на номин­  
алната  или измерената  първоначални  стойност . 
1.9. ИЗПИТВАНЕ  ЗА ГРАНИЦИТЕ  
Използвайки  процедурата , описана  в този метод , може  да се 
направи  гранично  изпитване  при 100 mg/l от изпитваното  
вещество  или при неговата  граница  на разтворимост  в средата  
за изпитване  (тази която  е по-ниска ), за да се покаже , че ЕС 50 е 
по-голяма  от тази концентрация . Изпитването  за границите  
следва  да се проведе  с 20 дафнии  (за предпочитане  е в четири  
групи  по пет), със същия  брой  в контролата /контролите . Ако 
настъпи  някаква  имобилизация , следва  да се направи  цялостно  
изследване . Всякакво  анормално  поведение  следва  да бъде  
отбелязано . 
2. ДАННИ  
Данните  следва  да бъдат  обобщени  в таблична  форма , като 
показват  за всяка  третирана  група  и контролите , броя  на 
използваните  дафнии  и регистрираната  имобилизация  при 
всяко  наблюдение . Процентът  на имобилизираните  на 24-ия и 
48-ия час се представя  графично  срещу  концентрациите  на 
изпитване . Данните  се анализират  с помощта  на подходящи  
статистически  методи  (например  пробит -анализ  и др.), за да се 
изчислят  наклоните  на кривите  и ЕС 50 c 95 % граница  на 
вероятност  (p = 0,05) (7) (8).  
Когато  стандартните  методи  за изчисляване  на ЕС 50 не са 
приложими  за получените  данни , следва  да се използват  най- 
високата  концентрация , непричиняваща  имобилизация , и най- 
ниската  концентрация , предизвикваща  100 % имобилизация , 
като приближения  на ЕС 50 (това се смята  за средно  геометрично  
на тези две концентрации ). 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  следва  да съдържа  следното : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  и имащи  отношение  физикохимични  
свойства ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 946
 
— химични  идентификационни  данни , включително  чистота . 
Животински  вид за изпитването : 
— източник  и вид Daphnia,  доставчик  на източника  (ако е 
известен ), и използвани  условия  за културата  (включително  
източник , вид и количество  храна , честота  на хранене ). 
Условия  на изпитване : 
— описание  на съдовете  за изпитване : тип съдове , обем  на 
разтвора , брой  дафнии  на съд за изпитване , брой  на 
съдовете  за изпитване  (репликати ) на концентрация ; 
— методи  на подготовка  на изходните  разтвори  и на изпитване , 
включително  използването  на каквито  и да било  разт­  
ворители  или дисперсанти , използвани  концентрации ; 
— подробности  за водата  за разреждане : източник  и качествени  
характеристики  на водата  (рН, твърдост , съотношение  
Ca/Mg, съотношение  Na/K, алкалност , проводимост  и др.); 
състав  на реконституираната  вода , ако е използвана  такава ; 
— инкубационни  условия : температура , светлинен  интензитет  и 
периодичност , разтворен  кислород , рН и др. 
Резултати : 
— броят  и процентът  на дафниите , които  са имобилизирани  или 
проявяват  някакви  неблагоприятни  ефекти  (включително  
анормално  поведение ) в контролите  и във всяка  третирана  
група , при всяко  наблюдение , описание  на природата  на 
наблюдаваните  ефекти ; 
— резултати  и дата на извършеното  изпитване  с референтно  
вещество , ако има такива ; 
— следва  да бъдат  докладвани  също  и номиналните  конце­  
нтрации  на изпитване , и резултатът  от всички  анализи  за 
определяне  на концентрацията  на изпитваното  вещество  в 
съдовете  за изпитване ; ефикасността  на събиране  на метода  
и границите  на определяне ; 
— всички  физикохимични  измервания  на температура , рН и 
разтворен  кислород , направени  по време  на изпитването ; 
— ЕС 50 на 48-ия час за имобилизация  с интервалите  на 
надеждност  и графики  от модела , използван  за тяхното  
изчисляване , наклона  на кривите  на реакция  на дозата  и 
тяхната  стандартна  грешка ; статистически  процедури , 
използвани  при определяне  на ЕС 50 (тези данни  за имоб­  
илизация  на 24-ия час също  следва  да се докладват , когато  
са измерени ); 
— обяснение  на всякакви  отклонения  от метода  на изпитване  и 
дали  тези отклонения  влияят  върху  резултатите  от 
изпитването . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ISO 6341. (1996). Water quality — Determination of the inhi ­
bition of the mobility of  Daphnia magna  Straus (Cladocera, 
Crustacea) — Acute toxicity test. Third edition, 1996.  
(2) EPA OPPTS 850.1010. (1996). Ecological Effects Test 
Guidelines — Aquatic Invertebrate Acute Toxicity Test, 
Freshwater Daphnids.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 947
 
(3) Environment Canada. (1996) Biological test method. Acute 
Lethality Test Using  Daphnia  spp. EPS 1/RM/11. Environment 
Canada, Ottawa, Ontario, Canada.  
(4) Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of Difficult 
Substances and Mixtures. OECD Environmental Health and 
Safety Publication. Series on Testing and Assessment. No. 23. Paris 2000.
 
(5) Commission of the European Communities. Study D8369. 
(1979). Inter-laboratory Test Programme concerning the study of the ecotoxicity of a chemical substance with respect to  
Daphnia .
 
(6) OECD Guidelines for the Testing of Chemicals. Guideline 211:  
Daphnia magna  Reproduction Test, adopted September 1998.  
(7) Stephan C.E. (1977). Methods for calculating an LC50. In 
Aquatic Toxicology and Hazard Evaluation (edited by F. I. 
Mayer and J. L. Hamelink). ASTM STP 634 — American Society for Testing and Materials. Pp 65—84
 
(8) Finney D. J. (1978). Statistical Methods in Biological Assay. 3  rd 
ed. London. Griffin, Weycombe, UK.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 948
 
Приложение  1 
НЯКОИ  ХИМИЧНИ  ХАРАКТЕРИСТИКИ  НА ПРИЕМЛИВАТА  ВОДА  
ЗА РАЗРЕЖДАНЕ  
Вещество  Концентрация  
Суспендирани  вещества  < 20 mg/l 
Общ  органичен  въглерод  < 2mg/l 
Свързани  амониеви  йони  < 1 μg/l 
Остатъчен  хлор  < 10 μg/l 
Общи  органофосфорни  пестициди  < 50 ng/l 
Общи  органохлорни  пестициди  плюс  полихлорирани  
бифенили  < 50 ng/l 
Общ  органичен  хлор  < 25 ng/l  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 949
 
Приложение  2 
ПРИМЕРИ  ЗА ПОДХОДЯЩА  РЕКОНСТИТУИРАНА  ВОДА  ЗА 
ИЗПИТВАНЕ  
ISO Вода  за изпитване  (1) 
Изходни  разтвори  (едно  вещество ) За приготвянето  на реконст­  
итуирана  вода  се добавят  
следните  обеми  от изходните  
разтвори  към 1 литър  
вода  (*) вещество  количество , добавено  
към 1 литър  вода  (*) 
Калциев  хлорид  
CaCl  2 , 2H  2 O 11,76 g 25 ml 
Магнезиев  сулфат  
MgSO  4 , 7H  2 O 4,93 g 25 ml 
Натриев  бикарбонат  
NaHCO  3 2,59 g 25 ml 
Калиев  хлорид  
КСl 0,23 g 25 ml  
(*) Вода  с подходяща  чистота , например  дейонизирана , дестилирана  или преминала  
обратна  осмоза , като проводимостта  ѝ за предпочитане  не превишава  10 μЅ.cm  -1 . 
Среди  Elendt M7 и M4 
Аклиматизация  към среди  Elendt М4 и М7 
Някои  лаборатории  са изпитали  затруднения  при прекия  пренос  на Daphnia 
в среди  М4 и М7. Въпреки  това е постигнат  известен  успех  при пост­  
епенната  аклиматизация , т.е. преместването  от собствената  среда  в 30 % 
Elendt, после  в 60 % Elendt и след  това в 100 % Elendt. Периодите  на 
аклиматизация  могат  да продължат  до месец . 
Подготовка  
Остатъчен  елемент  
Отделните  изходни  разтвори  (I) на индивидуални  остатъчни  елементи  първо  
се подготвят  във вода  с подходяща  чистота , напр . дейонизирана , дест­  
илирана  или чрез обратна  осмоза . От тези различни  изходни  разтвори  (I) 
се подготвя  (II) втори  еднократен  изходен  разтвор , който  съдържа  всичките  
остатъчни  елементи  (комбиниран  разтвор ), т.е.: 
Изходен (и) разтвор (и) I (едно  
вещество ) Количество , добавено  
към вода  (mg/l) Концентрация  (по 
отношение  на средата  
М4) За подготовката  на комбинирания  изходен  
разтвор  II се добавя  следното  количество  от 
изходен  разтвор  I към водата  (ml/1) 
M4 M7  
Н 3 ВО 3 57 190 20 000 пъти  1,0 0,25 
MnCl  2 .4H  2 O 7 210 20 000 пъти  1,0 0,25 
LiCl 6 120 20 000 пъти  1,0 0,25  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 950
 
Изходен (и) разтвор (и) I (едно  
вещество ) Количество , добавено  
към вода  (mg/l) Концентрация  (по 
отношение  на средата  
М4) За подготовката  на комбинирания  изходен  
разтвор  II се добавя  следното  количество  от 
изходен  разтвор  I към водата  (ml/1) 
M4 M7  
RbCl 1 420 20 000 пъти  1,0 0,25 
SrCl  2 .6H  2 O 3 040 20 000 пъти  1,0 0,25 
NaBr 320 20 000 пъти  1,0 0,25 
Na 2 MoO  4 .2H  2 O 1 230 20 000 пъти  1,0 0,25 
CuCl  2 .2H  2 O 335 20 000 пъти  1,0 0,25 
ZnCl  2 260 20 000 пъти  1,0 1,0 
CoCl  2 .6H  2 O 200 20 000 пъти  1,0 1,0 
KI 65 20 000 пъти  1,0 1,0 
Na 2 SeO  3 43,8 20 000 пъти  1,0 1,0 
NH  4 VO  3 11,5 20 000 пъти  1,0 1,0 
Na 2 EDTA.2H  2 O 5 000 2 000 пъти  — — 
FeSO  4 .7H  2 O 1 991 2 000 пъти  — — 
КактКакто  Na 2 EDTA, така и FeSO  4 разтворите  се приготвят  поединично , събират  се аедно  и веднага  се 
поставят  в автоклав . 
Това  дава: 
2 1 Fe-EDTA разтвор  1 000 пъти  20,0 5,0  
М4 и М7 среда  
М4 и М7 среда  се приготвят , като се използва  изходен  разтвор  II, макрон­  
утриенти  и витамини , както  следва : 
Количество , добавено  
към водата  (mg/l) Концентрация  (по 
отношение  на средата  
М4) Количество  от изходния  разтвор  II, добавено , 
за да се приготви  средата  (ml/l) 
М4 М7 
Изходен  разтвор  II 
(комбинирани  остатъчни  
елементи ) 20 пъти  50 511 
Макронутриентни  
изходни  разтвори  (едно  
веществ o) 
СаСl 2 .2Н 2 0 293 800 1 000 пъти  1,0 1,0 
МgЅО 4 .7Н 2 О 246 600 2 000 пъти  0,5 0,5 
КСl 58 000 10 000 пъти  0,1 0,1 
NаНСО  3 64 800 1 000 пъти  1,0 1,0 
Nа 2 SiO  3 .9Н 2 О 50 000 5 000 пъти  0,2 0,2 
NaNO  3 2 740 10 000 пъти  0,1 0,1 
КН 2 РО 4 1 430 10 000 пъти  0,1 0,1 
КН 2 РО 4 1 840 10 000 пъти  0,1 0,1  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 951
 
Количество , добавено  
към водата  (mg/l) Концентрация  (по 
отношение  на средата  
М4) Количество  от изходния  разтвор  II, добавено , 
за да се приготви  средата  (ml/l) 
М4 М7 
Изходни  комбинирани  
витамини  — 10 000 пъти  0,1 0,1 
Изходният  разтвор  комбинирани  витамини  е изготвен  чрез добавяне  на 3 витамина  към 1 литър  вода , както  е 
показано  по-долу : 
Тиамин  хидрохлорид  750 10 000 пъти  
Цианокобаламин  (В 12 ) 10 10 000 пъти  
Биотин  7,5 10 000 пъти  
Изходните  комбиниран  витамин  се съхраняват  замразени  на малки  равни  
части . Витамините  се добавят  към средата  малко  преди  употреба . 
Забележка : За да се избегне  утаяването  на солите , когато  се приготвя  
пълната  среда , добавете  съхранените  малки  количества  на 
изходните  разтвори  към около  500—800 ml дейонизирана  
вода  и после  допълнете  до 1 литър . 
Забележка : Първата  публикация  за М4 средата  е на Elendt, В. Р. (1990). 
Selenium deficiency in crustacea; an ultrastructual approach to antennal damage in  Daphnia magna  Straus. Protoplasma, 154, 
25—33.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 952
 
В.3. СЛАДКОВОДНИ  ВОДОРАСЛИ  И ЦИАНОБАКТЕРИИ , 
ИЗПИТВАНЕ  ЗА ПОТИСКАНЕ  НА РАСТЕЖА  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на ОИСР  TG 201 (2006) (1).  
1.1. УВОД  
Методите  за изпитване  периодично  се преразглеждат  и акту­  
ализират  в контекста  на научния  напредък . Методът  на 
изпитване  C.3 трябваше  да бъде  преразгледан , за да се 
включат  допълнителни  видове  и за да отговори  на изискванията  
за оценяване  на риска  и класифициране  на химикали . Преразг­  
леждането  беше  извършено  въз основа  на обширен  практически  
опит , научен  напредък  в сферата  на изследванията  за токсичност  
при водораслите  и широкообхватна  регулаторна  употреба , която  
е налице  след  първоначалното  приемане . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
За целите  на настоящия  метод  на изпитване  се използват  
следните  определения  и съкращения : 
Биомаса : сухото  тегло  от жива  материя , присъстваща  в дадена  
популация , изразено  посредством  определен  обем ; например  mg 
изпитван  разтвор  от водорасли /литър . Обикновено  „биомаса “ се 
определя  като маса , но в настоящото  изпитване  думата  се 
използва  за маса  за обем . Също  така в настоящото  изпитване  
сурогатите  на биомаса , например  преброяването  на клетки , 
флуоресценция  и т.н., се измерват  по принцип  и следователно  
употребата  на термина  „биомаса “ се отнася  и до измервания  на 
тези сурогати . 
Коефициент  на вариация : безразмерна  мярка  на неравно­  
мерността  на параметър , определена  като съотношението  
между  стандартното  отклонение  и средната  стойност . Това  
също  така може  да бъде  изразено  като процентна  стойност . 
Средният  коефициент  на вариация  на средната  специфична  
скорост  на растеж  в повторните  проби  от контролни  култури  
се изчислява , както  следва : 
1. Изчисляване  на % CV на средната  специфична  скорост  на 
растеж  от дневните  скорости  на растеж /скоростите  на 
растеж  по сектори  за съответната  повторна  проба . 
2. Изчисляване  на средната  стойност  на всички  стойности , 
изчислени  в точка  1, за да се получи  средният  коефициент  
на вариация  на дневната  специфична  скорост  на растеж /­ 
специфична  скорост  на растеж  по сектори  в повторните  
проби  от контролни  култури . 
ECx: концентрацията  на изпитваното  вещество , разтворено  в 
изпитваната  среда , което  води  до x % ( например  50 %) 
намаляване  на растежа  на изпитвания  организъм  в рамките  на 
даден  период  на експозиция  (който  трябва  да бъде  посочен  
изрично , ако се отклонява  от пълната  или нормалната  продълж­  
ителност  на изпитването ). За да се обозначи  недвусмислено  
стойността  на EC, получена  от скоростта  на растеж  или от 
добива , се използват  съответно  символите  „E  r C“ и „E  y C“. 
Среда  на растеж : напълно  синтетичната  културална  среда , в 
която  растат  изпитваните  водорасли , когато  са изложени  на 
изпитваното  вещество . Изпитването  вещество  обикновено  ще 
бъде  разтваряно  в средата  за изпитване . 
Скорост  на растеж  (средна  специфична  скорост  на растеж ): 
логаритмичното  нарастване  на биомасата  по време  на периода  
на експозиция . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 953
 
Най-ниска  концентрация  на наблюдавано  въздействие  
(LOEC)  е най-ниската  изпитвана  концентрация , при която  за 
веществото  се наблюдава  статистически  значимо  понижаващо  
въздействие  върху  растежа  (при p < 0,05) в сравнение  с 
контролната  проба , в рамките  на дадено  време  на експозиция . 
Въпреки  това всички  изпитвани  концентрации , по-големи  от 
LOEC, трябва  да имат  вредно  въздействие , равно  или по- 
голямо  от наблюдаваното  при LOEC. Когато  тези две условия  
не могат  да бъдат  изпълнени , трябва  да се даде  пълно  обяснение  
за това, как е избрана  LOEC (и следователно  NOEC).  
Концентрация  без наблюдавано  въздействие  (NOEC) : 
изпитваната  концентрация  непосредствено  под LOEC.  
Променлива  на реакция : променлива  за оценяване  на токсич­  
ността , получена  от измерваните  параметри , описващи  биомаса  
чрез различни  методи  на изчисление . За този метод  скоростите  
на растеж  и добив  са променливи  на реакция , получени  от 
прякото  измерване  на биомаса  или който  и да е от посочените  
сурогати . 
Специфична  скорост  на растеж : променлива  на реакция , 
определена  като частното  на разликата  на естествените  
логаритми  на параметър  на наблюдение  (биомаса  в настоящия  
метод  за изпитване ) и съответния  период  от време . 
Добив : стойността  на измерваната  променлива  в края  на 
периода  на експозиция  минус  стойността  на измерваната  
променлива  в началото  на периода  на експозиция , която  
изразява  увеличаването  на биомасата  по време  на изпитването . 
1.3. ПРИЛОЖИМОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Настоящият  метод  за изпитване  е най-лесно  приложим  към 
водоразтворими  вещества , за които  е вероятно  при условията  
на изпитването  да останат  във водата . За изпитването  на 
вещества , които  са летливи , силно  адсорбиращи , оцветени , със 
слаба  водоразтворимост  или вещества , които  могат  да повлияят  
на наличността  на хранителни  вещества  или минерали  в средата  
на изпитване , може  да са нужни  определени  изменения  на 
описаната  процедура  (например  затворена  система , 
предварителна  обработка  на съдовете  за изпитване ). Указания  
за някои  подходящи  изменения  са дадени  в (2), (3) и (4). 
1.4. ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Целта  на настоящото  изпитване  е да се определят  въздействията  
на дадено  вещество  върху  растежа  на сладководните  микрово­  
дорасли  и/или цианобактерии . Експоненциално  растящите  
изпитвани  организми  са изложени  на действието  на изпитваното  
веществото  в култури  на партиди , обикновено  за период  от 
72 часа. Въпреки  относително  кратката  продължителност  на 
изпитването  могат  да бъдат  оценени  въздействията  върху  
няколко  поколения . 
Реакцията  на системата  е намаляване  на растежа  в серии  
култури  от водорасли  (изпитвани  единици ), изложени  на 
действието  на различни  концентрации  на изпитваното  
вещество . Реакцията  се оценява  като функция  на конце­  
нтрацията  на експозиция  в сравнение  със средния  растеж  на 
повторни , неизложени  на въздействие  контролни  култури . За 
пълното  представяне  на реакцията  на системата  на токсични  
въздействия  (оптимална  чувствителност ) на културите  се дава 
възможност  за неограничен  експоненциален  растеж  в условия  
на достатъчно  хранителни  вещества  и непрекъсната  светлина  в 
течение  на достатъчен  период  от време , за да се измери  
намаляването  на специфичната  скорост  на растеж . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 954
 
Растежът  и потискането  на растежа  се определят  количествено  
чрез измервания  на биомасата  от водорасли  като функция  на 
времето . Биомасата  на водорасли  се определя  като сухо  
вещество  за единица  обем , например  mg водорасли  на литър  
изпитван  разтвор . Въпреки  това сухото  вещество  се измерва  
трудно  и следователно  се използват  сурогатни  параметри . От 
тези сурогати  най-често  се използва  преброяване  на клетките . 
Други  сурогатни  параметри  включват  обем  на клетката , 
флуоресценция , оптична  плътност  и т.н. Трябва  да е известен  
факторът  на преобразуване  между  измервания  сурогатен  
параметър  и биомасата . 
Крайната  цел на изпитването  е потискането  на растежа , изразено  
като логаритмично  нарастване  в биомасата  (средната  спец­  
ифична  скорост  на растеж ) по време  на периода  на експозиция . 
От средните  специфични  скорости  на растеж , регистрирани  в 
поредица  от изпитвани  разтвори , се определя  концентрацията , 
при която  се осъществява  потискане  на скоростта  на растежа  
до определените  x % (например  50 %) и се изразява  като E r C x 
(например  E r C 50 ). 
За прилагането  на настоящия  метод  съгласно  регулаторната  
рамка  на ЕС изчисляването  на резултатите  следва  да се базира  
върху  средната  специфична  скорост  на растеж  поради  
причините , описани  в раздел  2.2 по-долу . Допълнителната  
променлива  на реакция , използвана  в настоящия  метод  на 
изпитване , е добивът , който  може  да е нужен  за изпълнението  
на специфични  регулаторни  изисквания  в някои  държави . Той се 
определя  като биомасата  в края  на периода  на експозиция  минус  
биомасата  в началото  на периода  на експозиция . От добива , 
регистриран  в редица  от изпитвани  разтвори , се изчислява  
концентрацията , при която  се осъществява  потискане  на 
добива  до определените  x % (например  50 %) и се изразява  
като E y C x (например  E y C 50 ). 
В допълнение  най-ниската  концентрация  на наблюдавано  възде­  
йствие  (LOEC) и липсата  на концентрация  на наблюдавано  
въздействие  (NOEC) могат  да бъдат  определени  по статист­  
ически  начин . 
1.5. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Информацията  за изпитваното  вещество , която  може  да се 
използва  при установяването  на условията  за изпитване , 
включва  структурната  формула , чистотата , устойчивостта  на 
светлина , устойчивостта  при условията  на изпитването , 
свойствата  на поглъщане  на светлината , pKa и резултатите  от 
изследванията  на трансформация , включително  
биоразграждането  във вода . 
Разтворимостта  във вода , коефициентът  за разделяне  октанол /­ 
вода  (P ow ) и парното  налягане  на изпитваното  вещество  трябва  
да са известни  и да е на разположение  валидиран  метод  за 
количествено  измерване  на веществото  в изпитваните  разтвори  
с отчетена  ефективност  на възстановяването  и граница  на 
откриването . 
1.6. РЕФЕРЕНТНО  ВЕЩЕСТВО  
Референтното (ите) вещество (а), като например  3,5-дихлорфенол , 
използван  в международното  кръгово  изпитване  (4), може (гат) 
да бъде (ат) изпитвано (и) като средство  за проверка  на 
процедурата  за изпитване . Калиевият  дихромат  също  може  да 
бъде  използван  като референтно  вещество  за зелените  
водорасли . Желателно  е референтното  вещество  да се изпитва  
най-малко  два пъти  годишно . 
1.7. ВАЛИДНОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
За да е валидно  изпитването , трябва  да бъдат  изпълнени  
следните  критерии  за резултати : ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 955
 
— Биомасата  в контролните  култури  би трябвало  да се е 
увеличила  експоненциално  с фактор  най-малко  16 в 
рамките  на 72-часовия  период  на изпитване . Това  съотв­  
етства  на специфична  скорост  на растеж  от 0,92 ден  –1 . За 
най-често  използваните  видове  скоростта  на растеж  обик­  
новено  е значително  по-висока  (вижте  допълнение  1). Този  
критерий  може  да не бъде  изпълнен , когато  се използват  
видове , които  растат  по-бавно  от тези, изброени  в 
допълнение  1. В този случай  периодът  на изпитване  се 
удължава , за да се получи  поне  16-кратен  растеж  на 
контролните  култури , като същевременно  растежът  трябва  
да бъде  експоненциален  през целия  период  на изпитване . 
Периодът  на изпитване  може  да бъде  намален  на поне  48 
часа, за да се поддържа  неограничен  експоненциален  
растеж  по време  на изпитването , при условие  че се постига  
минималният  фактор  за умножение  16. 
— Средният  коефициент  на вариация  за специфични  скорости  
на растеж  по сектори  (дни 0—1, 1—2 и 2—3 за 72-часови  
изпитвания ) в контролните  култури  (вижте  раздел  1.2, „коеф­  
ициент  на вариация “) не трябва  да превишава  35 %. Вижте  
втората  алинея  от раздел  2.2.1 за изчисляване  на специф­  
ичната  скорост  на растеж  по сектори . Този  критерий  се 
прилага  за средната  стойност  на коефициентите  на 
вариация , изчислени  за повторните  контролни  култури . 
— Коефициентът  на вариация  на средните  специфични  
скорости  на растеж  по време  на целия  период  на изпитване  
в повторни  контролни  култури  не трябва  да превишава  7 % в 
изпитванията  с Pseudokirchneriella subcapitata  и Desmo­
desmus subspicatus . За други , по-рядко  изпитвани  видове , 
стойността  не бива  да превишава  10 %.  
1.8. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.8.1.  Апаратура  
Съдовете  за изпитване  и другите  апарати , които  ще бъдат  в 
контакт  с изпитваните  разтвори , трябва  да бъдат  направени  
изцяло  от стъкло  или друг  химически  инертен  материал . 
Предметите  трябва  да бъдат  добре  почистени , за да се 
гарантира , че няма  органични  или неорганични  замърсители , 
които  да повлияят  на растежа  на водораслите  или върху  
състава  на изпитваните  разтвори . 
Съдовете  за изпитване  обикновено  са стъклени  колби  с размери , 
които  позволяват  достатъчен  обем  на културата  за измервания  
по време  на изпитването  и достатъчен  пренос  на маса  от CO  2 от 
атмосферата  (вижте  втората  алинея  от раздел  1.8.9). Отбележете , 
че обемът  на течността  трябва  да бъде  достатъчен  за аналитични  
изчисления  (вижте  петата  алинея  от раздел  1.8.11).  
В допълнение  ще се изискват  някои  или всички  от следните  
уреди : 
— Апаратура  за култивиране : препоръчва  се шкаф  или камера , 
в който /която  избраната  инкубационна  температура  да може  
да бъде  поддържана  при ± 2 °C.  
— Уреди  за измерване  на светлината : важно  е да се отбележи , 
че методът  на измерване  на интензитета  на светлината , и по- 
специално  видът  на рецептора  (колектора ), ще окаже  възде­  
йствие  върху  измерената  стойност . Препоръчително  е 
измерванията  да бъдат  направени  с използването  на 
сферичен  (4 π) рецептор  (който  реагира  на пряка  и 
отразена  светлина  от всички  ъгли  над и под равнината  на 
измерване ), или 2 π рецептор  (който  реагира  на светлината  
от всички  ъгли  над равнината  на измерване ). ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 956
 
— Апарат  за определяне  на биомасата  от водорасли . 
Преброяването  на клетки , което  е най-често  използваният  
сурогатен  параметър  за биомаса  от водорасли , може  да бъде  
направено  с използването  на електронен  брояч  на частици , 
микроскоп  с броячна  камера  или поточен  цитометър . Другите  
заместители  на биомасата  могат  да бъдат  измерени  с 
използването  на поточен  цитометър , флуориметър , 
спектрофотометър  или колориметър . Полезно  е да се изчисли  
коефициент  на превръщане , свързващ  броя  на клетките  със 
сухото  тегло . За да се осигурят  полезни  измервания  при ниски  
концентрации  на биомаса  при използването  на 
спектрофотометър , може  да е необходимо  да се използват  
кювети  с дължина  на светлинния  път поне  4 cm.  
1.8.2.  Изпитвани  организми  
Могат  да се използват  няколко  вида  неприкрепени  микрово­  
дорасли  и цианобактерии . Щамовете , изброени  в допълнение  1, 
са демонстрирани  като подходящи  при използването  на 
процедурата  на изпитване , определена  в настоящия  метод  на 
изпитване . 
Ако се използват  други  видове , следва  да се докладва  щамът  
и/или произходът . Трябва  да бъде  потвърдено , че експоненци­  
алният  растеж  на избраните  изпитвани  водорасли  може  да бъде  
поддържан  по време  на периода  на изпитване  при преобла­  
даващите  условия . 
1.8.3.  Среда  на растеж  
Препоръчват  се две алтернативни  среди  на растеж , средите  на 
ОИСР  и на AAP. Съставът  на тези среди  е показан  в допълнение  
2. Отбележете , че първоначалната  стойност  на pH и буферната  
способност  (регулираща  увеличаването  на pH) на двете  среди  са 
различни . Следователно  резултатите  от изпитванията  могат  да 
бъдат  различни  в зависимост  от използваната  среда , особено  
когато  се изпитват  йонизиращи  вещества . 
Може  да е необходимо  изменение  на средата  на растеж  за 
определени  цели , например  когато  се изпитват  метали  или 
хелатни  агенти  или за изпитване  при различни  стойности  на 
pH. Използването  на изменена  среда  трябва  да бъде  подробно  
описано  и обосновано  (3)(4).  
1.8.4.  Начална  концентрация  на биомасата  
Началната  биомаса  в изпитваните  култури  трябва  да бъде  еднаква  
във всички  изпитвани  култури  и достатъчно  ниска , за да позволява  
експоненциален  растеж  през целия  инкубационен  период  без риск  
от изчерпване  на хранителните  вещества . Началната  биомаса  не 
трябва  да превишава  0,5 mg/l като сухо  тегло . Препоръчват  се 
следните  начални  концентрации  на клетки : 
Pseudokirchneriella subcapitata  5 x 10  3 -10 4 клетки /ml 
Desmodesmus subspicatus  2-5 x 10  3 клетки /ml 
Navicula pelliculosa  10  4 клетки /ml 
Anabaena flos-aquae  10  4 клетки /ml 
Synechococcus leopoliensis  5 x 10  4 -10 5 клетки /ml 
1.8.5.  Концентрации  на изпитваното  вещество  
Диапазонът  на концентрация , в който  е възможно  да настъпят  
въздействия , може  да бъде  определен  на базата  на резултати  от 
изпитвания  за откриване  на диапазон . За крайното  определящо  
изпитване  трябва  да се изберат  поне  пет концентрации , 
подредени  в геометрична  поредица  с фактор , който  не 
превишава  3,2. За изпитвани  вещества , показващи  полегата  
крива  на реагиране  на концентрация , може  да бъде  обоснован  
и по-висок  фактор . Поредицата  от концентрации  трябва  по 
възможност  да обхваща  диапазона , при който  се постига  
5—75 % потискане  на скоростта  на растеж  на водораслите . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 957
 
1.8.6.  Повторни  проби  и контролни  проби  
Планът  на изпитването  следва  да включва  три повторни  проби  
от всяка  една  изпитвана  концентрация . Ако не се изисква  
определяне  на NOEC, планът  на изпитването  може  да бъде  
изменен , за да се увеличи  броят  на концентрациите  и да се 
намали  броят  на повторните  проби  за всяка  концентрация . 
Броят  на контролните  повторни  проби  трябва  да бъде  поне  
три и в най-добрия  случай  следва  да бъде  два пъти  повече  от 
броя  на повторните  проби , използвани  за всяка  една  изпитвана  
концентрация . 
Може  да бъде  приготвен  отделен  набор  от изпитвани  разтвори  
за аналитично  определяне  на концентрациите  на изпитваното  
вещество  (вижте  четвърта  и шеста  алинея  от раздел  1.8.11).  
Когато  се използва  разтворител , за да се направи  разтворимо  
изпитваното  вещество , в плана  на изпитването  трябва  да бъдат  
включени  допълнителни  контролни  проби , съдържащи  разт­  
ворителя  в същата  концентрация , каквато  е използвана  в 
изпитваните  култури . 
1.8.7.  Подготвяне  на инокулант  
За да се адаптират  изпитваните  водорасли  към условията  за 
изпитване  и да се гарантира , че водораслите  са във фаза  на експоне­  
нциален  растеж , когато  се използват  за инокулация  на изпитваните  
разтвори , се приготвя  инокулант  в изпитваната  среда  2—4 дни 
преди  започване  на изпитването . Биомасата  от водорасли  следва  
да бъде  приспособена , за да се осигури  преобладаване  на експоне­  
нциалния  растеж  в инокуланта  до започване  на изпитването . Инок­  
улантът  се инкубира  при същите  условия  като изпитваните  
култури . Измерете  увеличаването  на биомасата  в инокуланта , за 
да гарантирате , че растежът  е в рамките  на нормалния  диапазон  
за изпитвания  щам при условията  за култивиране . В допълнение  
3 е описан  пример  за процедурата  на култивиране  на водорасли . За 
да се избегне  синхронното  делене  на клетките  по време  на 
изпитването , би могло  да се наложи  втори  стадий  в размножаването  
на инокуланта . 
1.8.8.  Приготвяне  на изпитваните  разтвори  
Всички  разтвори  за изпитване  трябва  да съдържат  еднакви  
концентрации  на средата  на растеж  и началната  биомаса  на 
изпитваните  водорасли . Изпитваните  разтвори  на избраните  
концентрации  обикновено  се приготвят  чрез смесване  на 
стандартен  разтвор  на изпитваното  вещество  със средата  на 
растеж  и инокуланта . Стандартните  разтвори  обикновено  се 
приготвят  чрез разтваряне  на веществото  в изпитваната  среда . 
Разтворители , като например  ацетон , терт-бутилов  алкохол  и 
диметилформамид , могат  да се използват  като носители  за 
добавяне  на вещества  със слаба  водоразтворимост  към 
изпитваната  среда  (2)(3). Концентрацията  на разтворителя  не 
трябва  да превишава  100 μl/l и към всички  култури  (включ­  
ително  и контролните ) в изпитваните  серии  следва  да се 
добави  същата  концентрация  на разтворителя . 
1.8.9.  Инкубация  
Запушете  съдовете  за изпитване  с въздухопропускливи  
запушалки . Съдовете  се разклащат  и поставят  в апаратурата  за 
култивиране . По време  на изпитването  е необходимо  
водораслите  да се държат  в суспензия  и да се улесни  преносът  
на CO  2 . За тази цел следва  да се осъществява  постоянно  
разклащане  или разбъркване . Културите  следва  да бъдат  
поддържани  при температура  в диапазона  от 21 до 24 °C, 
регулирана  с отклонение  от ± 2 °C. За видовете , различни  от 
посочените  в допълнение  1, например  тропическите  видове , 
може  да са подходящи  по-високи  температури , при условие  че 
могат  да бъдат  изпълнени  критериите  за валидност . Препоръчва  
се колбите  да бъдат  поставяни  на случаен  принцип  и местата  им 
в инкубатора  да бъдат  сменяни  всеки  ден. ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 958
 
pH на контролната  среда  не би трябвало  да се увеличава  с 
повече  от 1,5 единици  по време  на изпитването . За метали  и 
смеси , които  частично  се йонизират  при стойности  на pH 
около  стойността  на pH при изпитването , може  да е нужно  
ограничаване  на отклонението  на pH, за да се получат  възпроиз­  
водими  и добре  дефинирани  резултати . Отклонение  < 0,5 pH 
единици  е технически  осъществимо  и може  да бъде  постигнато  
с осигуряване  на адекватен  процент  на пренос  на маса  от CO  2 от 
заобикалящия  въздух  към изпитвания  разтвор , например  чрез 
увеличаване  на честотата  на разклащане . Друга  възможност  е 
да се намали  потребността  от CO  2 чрез намаляване  на първон­  
ачалната  биомаса  или продължителността  на изпитването . 
Повърхността , където  се инкубират  културите , следва  да 
получава  непрекъсната  хомогенна  флуоресцентна  светлина , 
например  от вида  „студена  бяла  светлина “ или „дневна  свет­  
лина “. Щамовете  от водорасли  и цианобактерии  се различават  
в изискванията  си за светлина . Интензитетът  на светлината  
следва  да бъде  избран  така, че да подхожда  на използвания  
изпитван  организъм . За препоръчваните  видове  зелени  
водорасли  интензитетът  на светлината  на нивото  на изпитваните  
разтвори  се избира  в диапазона  на 60—120 μE·m  –2 ·s –1 , когато  
се измерва  в диапазона  на фотосинтетичната  ефективна  дължина  
на вълната  от 400—700 nm с използването  на подходящ  
рецептор . Някои  видове , по-специално  Anabaena flos-aquae , 
растат  добре  при ниски  интензитети  на светлина  и могат  да 
бъдат  увредени  при високи  интензитет . За такива  видове  
следва  да се избере  среден  интензитет  на светлината  в 
диапазона  40—60 μE·m  –2 ·s –1 . (За уреди  за измерване  на свет­  
лината , калибрирани  в луксове , еквивалентният  диапазон  
от 4 440—8 880 lux за студена  бяла  светлина  съответства  
приблизително  на препоръчвания  интензитет  на светлината  от 
60—120 μE·m  –2 ·s –1 ). Интензитетът  на светлината  не се 
отклонява  с повече  от ± 15 % от средния  интензитет  на свет­  
лината  върху  инкубационната  площ . 
1.8.10.  Продължителност  на изпитването  
Продължителността  на изпитването  обикновено  е 72 часа. 
Въпреки  това може  да се използва  по-кратка  или по-дълга  
продължителност  на изпитванията , при условие  че са спазени  
всички  критерии  за валидност  в раздел  1.7.  
1.8.11.  Измервания  и аналитични  определения  
Биомасата  от водорасли  във всяка  колба  се определя  най-малко  
веднъж  дневно  по време  на изпитването . Ако измерванията  се 
правят  на малки  обеми , взети  от изпитвания  разтвора  с пипета , 
те не бива  да се връщат  обратно . 
Измерването  на биомасата  се извършва  чрез ръчно  преброяване  
на клетките  с микроскоп  или електронен  брояч  на частици  (чрез 
преброяване  на клетки  и/или обем  на биомаса ). Могат  да се 
използват  алтернативни  техники , например  поточна  цитометрия , 
in vitro  или in vivo  хлорофилна  флуоресценция  (6)(7) или 
оптична  плътност , при условие  че може  да бъде  демонстрирана  
задоволителна  корелация  с биомасата  в диапазона  на биомасата , 
която  се явява  по време  на изпитването . 
Стойността  на pH на разтворите  се измерва  в началото  и в края  
на изпитването . 
При условие  че е налице  аналитична  процедура  за определяне  
на изпитваното  вещество  в използвания  диапазон  на конце­  
нтрацията , изпитваните  разтвори  следва  да бъдат  анализирани , 
за да се потвърдят  първоначалните  концентрации  и 
поддържането  на концентрациите  на експозиция  по време  на 
изпитването . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 959
 
Анализът  на концентрацията  на изпитваното  вещество  в 
началото  и края  на изпитването  при ниска  и висока  изпитвана  
концентрация , както  и на концентрация  около  очакваната  EC  50 
може  да е достатъчен  в случаите , при които  има вероятност  
концентрациите  на експозиция  да варират  с по-малко  от 20 % 
от номиналните  стойности  по време  на изпитването . Препоръчва  
се анализ  на всички  концентрации  в началото  и в края  на 
изпитването , ако вероятността  концентрациите  да останат  в 
рамките  на 80—120 % от номиналните  е малка . За летливи , 
нестабилни  или силно  адсорбиращи  изпитвани  вещества  се 
препоръчва  допълнително  вземане  на проби  за анализ  на 24- 
часови  интервали  по време  на периода  на експозиция , за да се 
определи  по-добре  загубата  на изпитвано  вещество . За тези 
вещества  ще са необходими  допълнителни  повторни  проби . 
Във всички  случаи  определянето  на концентрациите  на 
изпитваното  вещество  трябва  да бъде  извършвано  само  в един  
съд с повторна  проба  при всяка  една  изпитвана  концентрация  
(или в съдържанието  на съдовете , групирани  от повторна  проба ). 
Изпитваната  среда , приготвена  специално  за анализ  на конце­  
нтрации  на експозиция  по време  на изпитването , следва  да 
бъде  третирана  по същия  начин  както  тези, използвани  за 
изпитването , т.е. те трябва  да бъдат  инокулирани  с водорасли  
и инкубирани  при еднакви  условия . Ако се изисква  анализ  на 
концентрацията  на разтвореното  изпитвано  вещество , може  да е 
нужно  да се отделят  водораслите  от средата . За предпочитане  е 
отделянето  да се прави  чрез центрофугиране  при ниска  сила  на 
притегляне , достатъчна  за утаяване  на водораслите . 
Ако има доказателство , че концентрацията  на веществото , което  
се изпитва , е била  задоволително  поддържана  в рамките  на 
± 20 % от номиналната  или измерваната  първоначална  конце­  
нтрация  през цялото  време  на изпитването , анализът  на 
резултатите  може  да бъде  базиран  на номиналните  или 
измерените  първоначални  стойности . Ако отклонението  от 
номиналната  или измерената  първоначална  концентрация  е по- 
голямо  от ± 20 %, анализът  на резултатите  следва  да се основава  
на средната  геометрична  концентрация  по време  на експозиция  
или на модели , описващи  намаляването  на концентрацията  на 
изпитваното  вещество  (3)(8).  
Изпитването  за потискане  на растежа  на водораслите  е по- 
динамична  система  за изпитване  от повечето  други  крат­  
косрочни  изпитвания  за водна  токсичност . Като  следствие  
може  да е трудно  да се определят  действителните  концентрации  
на експозиции , особено  за адсорбиращи  вещества , изпитвани  
при ниски  концентрации . В такива  случаи  изчезването  на 
веществото  от разтвор  чрез адсорбция  към увеличаващата  се 
биомаса  от водорасли  не означава , че то е изгубено  от 
системата  за изпитване . Когато  се анализира  резултатът  на 
изпитването , следва  да се провери  дали  намаляването  на конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  в процеса  на изпитване  се 
придружава  от намаляване  в потискането  на растежа . Ако това е 
така, може  да се обмисли  прилагането  на подходящ  модел , 
който  описва  намаляването  на концентрацията  на изпитваното  
вещество  (8). В противен  случай  може  да е подходящо  анализът  
да се базира  на резултатите  от първоначалните  (номинални  или 
измерени ) концентрации . 
1.8.12.  Други  наблюдения  
Следва  да бъдат  извършени  наблюдения  с микроскоп , за да се 
потвърди  нормалният  и здрав  външен  вид на инокуланта , както  
и да се види  дали  има промени  във външния  вид на водораслите  
(които  могат  да бъдат  причинени  от експозицията  на възде­  
йствието  на изпитваното  вещество ) в края  на изпитването . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 960
 
1.8.13.  Гранично  изпитване  
При определени  условия , например  когато  предварителното  
изпитване  показва , че изпитваното  вещество  няма  токсични  възде­  
йствия  при концентрации  до 100 mg·l  –1 или до неговата  граница  на 
разтворимост  в изпитваната  среда  (в зависимост  от това кое е по- 
ниско ), може  да бъде  осъществено  гранично  изпитване , включващо  
сравнение  на реакциите  в контролна  група  и една от третираните  
групи  (100 mg·l  –1 или концентрация , равна  на границата  на разт­  
воримост ). Настоятелно  се препоръчва  това да бъде  подкрепено  от 
анализ  на концентрацията  на експозиция . Всички  предишни  описани  
условия  на изпитване  и критерии  за валидност  се прилагат  към 
граничното  изпитване , с изключение  на това, че броят  на 
третираните  повторни  проби  трябва  да бъде  най-малко  шест . Проме­  
нливите  на реакция  в контролната  и третираната  група  могат  да 
бъдат  анализирани  с използването  на статистически  тест, за да се 
сравнят  средните  стойности , например  t-тест на Student. Ако проме­  
нливостта  на двете  групи  не е еднаква , трябва  да бъде  извършен  t- 
тест, предназначен  за различни  видове  променливост . 
1.8.14.  Изменение  за силно  оцветените  вещества  
Ирадиацията  (интензитетът  на светлината ) трябва  да бъде  в най- 
високия  край  на диапазона , предписан  в настоящия  метод  за 
изпитване : 120 μE m  –2 s –1 или по-висока . 
Светлинният  път трябва  да бъде  скъсен  посредством  намаляване  
на обема  на изпитваните  разтвори  (в диапазона  5—25 ml).  
Трябва  да се приложи  достатъчно  раздвижване  (например  
посредством  умерено  разклащане ), за да се получи  висока  
честота  на експозиция  на водораслите  на висока  ирадиация  на 
повърхността  на културата . 
2. ДАННИ  
2.1. ПОСТРОЯВАНЕ  НА КРИВИ  НА РАСТЕЖА  
Биомасата  в съдовете  за изпитване  може  да се изрази  в единици  
на сурогатния  параметър , използван  за измерване  (например  
брой  клетки , флуоресценция ). 
Табулирайте  изчислената  концентрация  на биомасата  в 
изпитваните  култури  и контролните  проби  заедно  с концентрациите  
на изпитвания  материал  и времената  на измерване , записани  с 
разделителна  способност  най-малко  час, за да начертаете  графики  
на кривите  на растежа . На този първи  етап може  да са полезни  както  
логаритмични , така и линейни  скали , но логаритмичните  скали  са 
задължителни  и в общия  случай  дават  по-добро  представяне  на 
вариациите  в модела  на растежа  по време  на периода  за изпитване . 
Отбележете , че експоненциалният  растеж  дава права  линия , когато  
се начертае  в логаритмична  скала , и че ъгълът  на наклона  на 
линията  (наклон ) показва  специфичната  скорост  на растеж . 
Като  използвате  графиките , проверете  дали  контролните  
култури  растат  експоненциално  с очакваната  скорост  през 
цялото  изпитване . Разгледайте  внимателно  всички  точки  с 
данни  и вида  на графиките  и проверете  необработените  данни  
и процедурите  за евентуални  грешки . По-специално  проверете  
точките  с данни , за които  изглежда , че се отклоняват  поради  
системна  грешка . Ако е очевидно , че могат  да се установят  
и/или предположат  процедурни  грешки  с голяма  вероятност , 
специфичната  точка  с данни  се маркира  като отклонение  и не 
се включва  в последващия  статистически  анализ . (Нулева  конце­  
нтрация  на водорасли  в един  от двата  или трите  съда  с повторни  
проби  може  да е индикация , че съдът  не е инокулиран  правилно  
или не е бил почистен  добре ). Причините  за отхвърлянето  на 
точка  с данни  като отклонение  трябва  да се формулират  ясно  в 
протокола  от изпитването . Приемливите  причини  са само  
(редки ) грешки  в процедурата , а не просто  недостатъчно  добра  
точност . Статистическите  процедури  за идентифициране  на 
отклонения  имат  ограничено  използване  за този тип проблем  и 
не могат  да заменят  експертната  преценка . Препоръчително  е 
точките  с отклонения  (маркирани  като такива ) да се запазят  
между  точките  с данни , показани  в последващите  графични  
или таблични  представяния  на данни . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 961
 
2.2. ПРОМЕНЛИВИ  НА РЕАКЦИЯ  
Целта  на изпитването  е да се определят  въздействията  на 
изпитваното  вещество  върху  растежа  на водораслите . 
Настоящият  метод  на изпитване  описва  две променливи  на 
реакция , тъй като държавите -членки  имат  различни  предпоч­  
итания  и регулаторни  нужди . За да се приемат  резултатите  от 
изпитването  във всички  държави -членки , въздействията  следва  
да се оценяват , като се използват  и двете  променливи  на реакция  
a) и б), описани  по-долу . 
a) Средна  специфична  скорост  на растеж : тази променлива  на 
реакция  се изчислява  на базата  на логаритмичното  нарастване  
на биомасата  през периода  на изпитването , изразено  за ден. 
б) Добив : тази променлива  на реакция  представлява  биомасата  в 
края  на изпитването  минус  началната  биомаса . 
За прилагането  на настоящия  метод  съгласно  регулаторната  рамка  
на ЕС изчисляването  на резултатите  следва  да се базира  върху  
средната  специфична  скорост  на растеж  поради  причините , 
описани  по-долу . Би трябвало  да се отбележи , че стойностите  на 
токсичността , изчислени  с използването  на тези две променливи  
на реакция , не са сравними  и тази разлика  трябва  да се разпознава , 
когато  се използват  резултатите  от изпитването . Стойностите  на 
EC x , базирани  на средната  специфична  скорост  на растеж  (E r C x ), в 
общия  случай  ще са по-високи  от резултатите , базирани  на добива  
(E y C x ), ако се придържате  към условията  за изпитване  на 
настоящия  метод  за изпитване  поради  математическата  база на 
съответните  подходи . Това  не бива  да се тълкува  като разлика  в 
чувствителността  между  двете  променливи  на реакция , просто  
двете  стойности  са математически  различни . Понятието  за 
средна  специфична  скорост  на растеж  се основава  на общия  
модел  на експоненциален  растеж  на водораслите  в неограничени  
култури , където  токсичността  се оценява  на базата  на възде­  
йствията  върху  скоростта  на растежа , без да зависи  от 
абсолютното  ниво  на специфичната  скорост  на растеж  на 
контролната  проба , от наклона  на кривата  на реакция  на конце­  
нтрация  или от продължителността  на изпитването . Противо­  
положно  на това резултатите , базирани  на добива , зависят  от 
всички  тези други  променливи . E y C x зависи  от специфичната  
скорост  на растеж  на вида  водорасли , използвани  във всяко  от 
изпитванията , и от максималната  специфична  скорост  на растеж , 
която  може  да варира  между  видовете  и дори  между  различните  
щамове  на водорасли . Тази  променлива  на реакция  не трябва  да се 
използва  за сравняване  на чувствителността  към токсични  
вещества  между  видовете  водорасли  или дори  между  различните  
щамове . Докато  използването  на средната  специфична  скорост  на 
растеж  за оценка  на токсичността  се предпочита  от научна  гледна  
точка , оценките  на токсичността , базирани  на добива , също  са 
включени  в настоящия  метод  на изпитване , така че да бъдат  удовл­  
етворени  действащите  регулаторни  изисквания  в някои  държави . 
2.2.1.  Средна  скорост  на растеж  
Средната  специфична  скорост  на растеж  за определен  период  се 
изчислява  като логаритмичното  нарастване  на биомасата  от 
уравнението  за всеки  отделен  съд с контролни  проби  и 
третирани  проби : 
μ iÄj ¼ ln X j – ln X i 
t j – t i (ден  –1 ) 
където : 
μ i—j е средната  специфичната  скорост  на растеж  за време  от i 
до j; 
X i е биомасата  в момента  i; 
X j е биомасата  в момента  j. ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 962
 
Изчислете  средната  стойност  за скоростта  на растеж  заедно  с 
оценки  на променливостта  за всяка  група  третирани  проби  и 
контролна  група . 
Изчислете  средната  специфична  скорост  на растеж  в течение  на 
целия  период  на изпитването  (обикновено  0—3 дни) с 
използване  на първоначално  инокулираната  биомаса  като 
начална  стойност , а не измерената  начална  стойност , защото  
по този начин  обикновено  се получава  по-голяма  точност . Ако 
оборудването , което  се използва  за измерване  на биомасата , 
позволява  достатъчно  точно  определяне  на малката  биомаса  на 
инокулума  (например  поточен  цитометър ), тогава  може  да се 
използва  концентрацията  на началната  биомаса . Освен  това 
оценете  скоростта  на растеж  по сектори , изчислена  като спец­  
ифичните  скорости  на растеж  за всеки  ден по време  на 
изпитването  (дни 0—1, 1—2 и 2—3), и проверете  дали  
скоростта  на растеж  на контролната  проба  остава  постоянна  
(вижте  критериите  за валидност , раздел  1.7). Значително  по- 
ниската  специфична  скорост  на растеж  в първия  ден в 
сравнение  с общата  средна  специфична  скорост  на растеж  
може  да е показател  за латентна  фаза . Докато  латентната  фаза  
може  да се сведе  до минимум  и практически  да се елиминира  в 
контролните  култури  чрез правилното  размножаване  на 
предварителна  култура , латентната  фаза  в експонираната  
култура  може  да е индикатор  за възстановяване  след  първон­  
ачален  токсичен  стрес  или намалена  експозиция  поради  загуба  
на изпитвано  вещество  (включително  сорбция  върху  биомасата  
на водораслите ) след  първоначалната  експозиция . От тук следва , 
че скоростта  на растеж  по сектори  може  да се оцени , за да се 
направи  оценка  на въздействията  на изпитваното  вещество , 
които  възникват  при процеса  на експозиция . Наличието  на 
съществени  разлики  между  скоростта  на растеж  по сектори  и 
средната  скорост  на растеж  показва , че има отклонение  от 
постоянния  експоненциален  растеж  и има основание  за вним­  
ателна  проверка  на кривите  на растежа . 
Процентното  потискане  на скоростта  на растежа  за всяка  
третирана  повторна  проба  се изчислява  от уравнението : 
% I r ¼ μ C – μ T 
μ C Ü 100  
където : 
% I  r : процентно  потискане  на средната  специфична  скорост  на 
растеж ; 
μ C : средна  стойност  за средната  специфична  скорост  на 
растеж  (μ) в контролната  група ; 
μ T : средна  специфична  скорост  на растеж  за третираната  
повторна  проба . 
Когато  за приготвянето  на изпитваните  разтвори  се използват  
разтворители , за изчисляването  на процентното  потискане  
следва  да се използват  контролните  проби  на разтворителите , а 
не контролните  проби  без разтворители . 
2.2.2.  Добив  
Добивът  се изчислява  като биомасата  в края  на изпитването  
минус  началната  биомаса  за всеки  отделен  съд с контролни  
проби  и с третирани  проби . За всяка  изпитвана  концентрация  
и контролна  проба  следва  да се изчисли  средната  стойност  на 
добива  заедно  с оценки  на променливостта . Процентното  
потискане  на добива  (%I  y ) може  да се изчисли  за всяка  
третирана  повторна  проба , както  следва : 
% I y ¼ ðY C – Y T Þ 
Y C Ü 100  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 963
 
където : 
% I  y : процентно  потискане  на добива ; 
Y C : средна  стойност  за добива  в контролната  група ; 
Y T : стойност  на добива  в третираната  повторна  проба . 
2.3. ПОСТРОЯВАНЕ  НА КРИВАТА  НА РЕАКЦИЯ  НА КОНЦЕН­  
ТРАЦИЯ  
Нанесете  процента  на потискане  като функция  на логаритъма  на 
концентрацията  на изпитваното  вещество  и внимателно  
проверете  графиката , като не отчитате  точките  с данни , които  
са изолирани  като отклонения  в първата  фаза . Прекарайте  
гладка  линия  през точките  с данни  на око или чрез компютърна  
интерполация , за да получите  първо  впечатление  от съотнош­  
ението  между  концентрацията  и реакцията , а след  това продъ­  
лжете , като приложите  по-подробен  метод , за предпочитане  
някой  компютризиран  статистически  метод . В зависимост  от 
предполагаемото  използване  на данните , качеството  (точност ) 
и количеството  на данните , както  и наличието  на инструменти  
за анализ  на данни , може  да се реши  (и понякога  е добре  обос­  
новано ) на този етап анализът  на данните  да се прекрати  и 
просто  да се отчетат  ключовите  величини  EC  50 и EC  10 (и/или 
EC 20 ) от нанесената  на око крива  (вижте  също  раздела  по-долу  
относно  стимулираните  въздействия ). Обоснованите  причини  да 
не се използва  статистически  метод  може  да включват : 
— данните  не са подходящи  за компютризирани  методи , чрез 
които  да се дадат  по-надеждни  резултати  от тези, които  
могат  да се получат  чрез експертна  оценка  — в такива  
ситуации  някои  компютърни  програми  може  дори  да не 
дадат  надеждно  решение  (повторенията  може  да не 
съвпадат  и др.), 
— реакциите  на стимулиран  растеж  не могат  да се обработят  
адекватно  с използване  на наличните  компютърни  програми  
(вижте  по-долу ). 
2.4. СТАТИСТИЧЕСКИ  ПРОЦЕДУРИ  
Целта  е да се получи  количествено  съотношение  на реакция  на 
концентрация  чрез регресионен  анализ . Може  да се използва  
тегловна  линейна  регресия  след  извършване  на преобразуване  
на данните  от ответната  реакция  в линейни  — например  в 
единици  пробит  или логит  или Weibull (9), но предпочитаните  
техники  са процедурите  на нелинейна  регресия , които  по-добре  
обработват  неизбежните  неравномерности  в данните  и 
отклоненията  от гладките  разпределения . При приближаването  
на нулево  или пълно  потискане  подобни  неравномерности  може  
да бъдат  увеличени  от преобразуването , като по този начин  
пречат  на анализа  (9). Следва  да се отбележи , че стандартните  
методи  на анализ  с помощта  на преобразувания  на пробит , логит  
или Weibull са предназначени  за използване  с дискретни  данни  
(например  смъртност  или оцеляване ) и трябва  да бъдат  
изменени , за да се приспособят  към данните  за растежа  или 
биомасата . Специфичните  процедури  за определяне  на стой­  
ностите  на EC  x от непрекъснати  данни  могат  да се намерят  в 
(10)(11) и (12). Използването  на нелинеен  регресионен  анализ  е 
допълнително  описано  в допълнение  4. ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 964
 
За анализа  на всяка  от променливите  на реакция  използвайте  
съотношението  на реакция  на концентрация  за да изчислите  
точковите  оценки  за стойностите  на EC  x . Когато  е възможно , 
следва  да се определят  95 % доверителни  граници  за всяка  
прогноза . Степента  на съответствие  на данните  от реакцията  и 
регресионния  модел  следва  да се оцени  графично  или статист­  
ически . Регресионният  анализ  следва  да се извърши  като се 
използват  реакциите  на отделните  повторни  проби , а не 
средните  стойности  на група  от третирани  проби . Ако обаче  
налагането  на нелинейна  крива  е трудно  или несполучливо  
поради  твърде  голямото  разсейване  в данните , проблемът  
може  да се заобиколи  чрез извършване  на регресия  върху  
средните  стойности  на група  като практичен  начин  за 
намаляване  на влиянието  на точки , за които  има съмнения , че 
се отклоняват  твърде  много . Използването  на тази възможност  
следва  да се отбележи  в протокола  от изпитването  като 
отклонение  от нормалната  процедура , тъй като нанасянето  на 
отделните  повторни  проби  на кривата  не е дало  добър  резултат . 
Оценките  на EC  50 и доверителните  граници  могат  да се получат  
и чрез използване  на линейна  интерполация  с оценка  на 
извадковата  грешка  (13), ако наличните  регресионни  модели /­ 
методи  не са подходящи  за данните . 
За оценяването  на LOEC и следователно  на NOEC и за възде­  
йствието  на изпитваното  вещество  върху  скоростта  на растеж  е 
необходимо  да се сравнят  средните  стойности  на третирана  проба  
като се използват  техниките  за анализ  на дисперсията  (ANOVA). 
След  това средната  стойност  за всяка  концентрация  трябва  да се 
сравни  със средната  стойност  на контролна  проба  с помощта  на 
подходящ  метод  за многократно  сравняване  или метод  за тестване  
на тенденция . Тестът  на Dunnett или William може  да е удобен  
(14)(15)(16)(17)(18). Необходимо  е да се оцени  дали  е в сила  
предположението  в ANOVA за хомогенност  на променливостта . 
Тази  оценка  може  да се извърши  графично  или чрез формален  тест 
(18). Подходящи  са тестовете  на Levene или Bartlett. Невярното  
предположение  за хомогенност  на променливостта  понякога  може  
да се коригира  чрез логаритмично  преобразуване  на данните . Ако 
хетерогенността  на променливостта  е много  голяма  и не може  да 
се коригира  чрез преобразувания , следва  да се обмисли  анализ  с 
методи  като низходящите  тестове  на Jonkheere за тенденции . 
Допълнителни  указания  относно  определянето  на NOEC могат  
да се намерят  в (12).  
Последните  научни  разработки  доведоха  до препоръката  конц­  
епцията  за NOEC да бъде  премахната  и заменена  с точкови  
оценки  на ECx, базирани  на регресия . Не е установена  
подходящата  стойност  на x за това изпитване  на водорасли . 
Изглежда , че диапазонът  от 10 до 20 % е подходящ  (в 
зависимост  от избраната  променлива  на реакция ) и е по-добре  
да бъдат  отчетени  и двете  стойности  EC  10 и EC  20 . 
2.5. СТИМУЛИРАНЕ  НА РАСТЕЖА  
Понякога  се наблюдава  стимулиране  на растежа  (отрицателно  
потискане ) при ниски  концентрации . Това  може  да е резултат  
от хормезис  („токсична  стимулация “) или от добавянето  на 
стимулиращи  растежа  фактори  с изпитвания  материал  към 
използваната  минимална  среда . Отбележете , че добавянето  на 
неорганични  хранителни  вещества  не би трябвало  да има 
пряко  въздействие , защото  изпитваната  среда  следва  да 
поддържа  излишък  от хранителни  вещества  през цялото  време  
на изпитването . Обикновено  стимулацията  с ниска  доза може  да 
се пренебрегне  при изчисляването  на EC  50 , освен  ако не е много  
крайна . При все това, ако е крайна  или ако трябва  да се изчисли  
стойността  на EC  x за ниско  x, може  да са необходими  специални  
процедури . Ако е възможно , следва  да се избягва  заличаване  на 
реакциите  при стимулиране  от анализа  на данните , а ако 
наличният  софтуер  за нанасяне  на криви  не може  да приеме  
незначителна  стимулация , би могло  да се използва  линейна  
интерполация  с оценка  на извадковата  грешка . Ако стимул­  
ацията  е крайна , може  да се обмисли  използване  на хормезен  
модел  (19).  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 965
 
2.6. НЕТОКСИЧНО  ПОТИСКАНЕ  НА РАСТЕЖА  
Поглъщащите  светлина  изпитвани  материали  могат  да 
предизвикат  намаляване  на скоростта  на растежа , тъй като засе­  
нчването  намалява  количеството  налична  светлина . Такива  
въздействия  от физическо  естество  следва  да бъдат  отделени  
от токсичните  въздействия  чрез изменение  на условията  на 
изпитването , а първите  следва  да се отчитат  отделно . Насоки  
могат  да се намерят  в (2) и (3). 
3. ОТЧИТАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  следното : 
Изпитвано  вещество : 
— физическо  естество  и съответни  физикохимични  свойства , 
включително  граница  на водоразтворимост , 
— данни  за химичната  идентификация , включително  чистота . 
Изпитвани  видове : 
— щам, доставчик  или източник  и използваните  условия  за 
културата . 
Условия  на изпитването : 
— дата на началото  на изпитването  и неговата  продължит­  
елност , 
— описание  на схемата  на изпитването : съдове  за изпитването , 
обеми  на културите , плътност  на биомасата  в началото  на 
изпитването , 
— състав  на средата , 
— изпитвани  концентрации  и повторни  проби  (например  брой  
на повторните  проби , брой  на изпитваните  концентрации  и 
използваната  геометрична  прогресия ), 
— описание  на подготвянето  на изпитваните  разтвори , включ­  
ително  използването  на разтворители  и др., 
— апаратура  за култивиране , 
— интензитет  и качество  на светлината  (източник , хомоген­  
ност ), 
— температура , 
— изпитвани  концентрации : номинални  тествани  концентрации  
и всички  резултати  от анализи  за определяне  на конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  в съдовете  за изпитване . 
Следва  да се отчете  ефективността  за възстановяване  на 
метода  и границата  на количествената  оценка  в тестовата  
матрица , 
— всички  отклонения  от настоящия  метод  на изпитване , 
— метод  за определянето  на биомасата  и доказателство  за 
корелация  между  измерения  параметър  и сухото  тегло . 
Резултати : 
— стойности  на pH в началото  и края  на изпитването  при 
всички  третирани  проби , 
— биомасата  за всяка  колба  при всяка  точка  на измерване  и 
метод  за измерване  на биомасата , ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 966
 
— криви  на растеж  (графика  на биомасата  в зависимост  от 
времето ), 
— изчислените  променливи  на реакция  за всяка  третирана  
повторна  проба  със средни  стойности  и коефициент  на 
вариациите  за повторните  проби , 
— графично  представяне  на съотношението  концентрация /­ 
ефект , 
— оценки  на токсичността  за променливите  на реакция , 
например  EC  50 , EC  10 , EC  20 и свързаните  доверителни  
интервали . Ако са изчислени  — LOEC и NOEC, както  и 
статистическия  метод  за тяхното  определяне , 
— ако е използван  ANOVA, мащабът  на въздействието , което  
може  да се открие  (например  най-малката  значима  разлика ), 
— всяка  стимулация  на растеж , открита  в която  и да е 
третирана  проба , 
— всички  други  наблюдавани  ефекти , например  морфологични  
изменения  във водораслите , 
— обсъждане  на резултатите , включително  всяко  влияние  върху  
резултата  от изпитването , появило  се поради  отклонения  от 
настоящия  метод  на изпитване . 
4. ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD TG 201 (2006) Freshwater Alga and Cyanobacteria, 
Growth Inhibition Test  
(2) ISO 1998: Water quality — Guidance for algal growth inhi ­
bition tests with poorly soluble materials, volatile compounds, 
metals and waster water. ISO/DIS 14442  
(3) OECD 2000: Guidance Document on Aquatic Toxicity 
Testing of Difficult Substances and mixtures. Environmental 
Health and Safety Publications. Series on Testing and 
Assessment, no. 23.  
(4) ISO 1998: Water quality — Sampling — Part 16: General 
Guidance for Biotesting. ISO 5667—16.  
(5) ISO 1993: Water quality — Algal growth inhibition test. ISO 
8692  
(6) Mayer, P., Cuhel, R. and Nyholm, N. (1997). A simple in 
vitro fluorescence method for biomass measurements in 
algal growth inhibition tests. Water Research 31: 2525—2531.  
(7) Slovacey, R.E. and Hanna, P.J. In vivo fluorescence determi ­
nations of phytoplancton chlorophyll, Limnology & Ocea ­
nography 22,5 (1977), pp.919—925  
(8) Simpson, S.L., Roland, M.G.E., Stauber, J.L. and Batley, G.E. 
(2003) Effect of declining toxicant concentrations on algal bioassay endpoints. Environ. Toxicol. Chem 22, 2073—2079.
 
(9) Christensen, E.R., Nyholm, N. (1984): Ecotoxicological 
Assays with Algae: Weibull Dose-Response Curves. Env. 
Sci. Technol. 19, 713—718.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 967
 
(10) Nyholm, N. Sørensen, P.S., Kusk, K.O. and Christensen, E.R. 
(1992): Statistical treatment of data from microbial toxicity 
tests. Environ. Toxicol. Chem. 11, 157—167.  
(11) Bruce, R.D., and Versteeg, D.J. (1992). A statistical procedure 
for modelling continuous toxicity data. Env. Toxicol. Chem. 
11:1485—1494.  
(12) OECD. (2004). Guidance Document on Statistical Analysis of 
Ecotoxicity Data.  
(13) Norberg-King T.J. (1988) An interpolation estimate for 
chronic toxicity: The ICp approach. National Effluent Toxicity Assessment Center Technical Report 05—88. USEPA, Duluth, MN.
 
(14) Dunnett, C.W. (1955) A multiple comparisons procedure for 
comparing several treatments with a control. J. Amer. Statist. 
Assoc. 50: 1096—1121  
(15) Dunnett, C.W. (1964) New tables for multiple comparisons 
with a control. Biometrics 20: 482—491.  
(16) Williams, D.A. (1971) A test for differences between 
treatment means when several dose levels are compared 
with a zero dose control. Biometrics 27: 103—117.  
(17) Williams, D.A. (1972) The comparison of several dose levels 
with a zero dose control. Biometrics 28: 510—531.  
(18) Draper, N.R. and Smith, H. (1981). Applied Regression 
Analysis, second edition. Wiley, New York.  
(19) Brain P. and Cousens R. (1989). An equation to describe 
dose-responses where there is stimulation of growth at low 
doses. Weed Research, 29, 93—96.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 968
 
Допълнение  1 
Щамове , за които  е демонстрирана  пригодност  за изпитването  
Зелени  водорасли  
— Pseudokirchneriella subcapitata  (известни  преди  като Selenastrum capri ­
cornutum ), ATCC 22662, CCAP 278/4, 61.81 SAG  
— Desmodesmus subspicatus  (известни  преди  като Scenedesmus subspicatus ) 
86.81 SAG  
Диатомеи  
— Navicula pelliculosa , UTEX 664  
Цианобактерии  
— Anabaena flos-aquae , UTEX 1444, ATCC 29413, CCAP 1403/13A  
— Synechococcus leopoliensis , UTEX 625, CCAP 1405/1  
Източници  на щамове  
Препоръчаните  щамове  са налични  в едновидови  водораслови  култури  от 
следните  колекции  (по азбучен  ред): 
ATCC: American Type Culture Collection  
10801 University Boulevard  
Manassas, Virginia 20110-2209  
USA  
CCAP, Culture Collection of Algae and Protozoa  
Institute of Freshwater Ecology,  
Windermere Laboratory  
Far Sawrey, Amblerside  
Cumbria  
LA22 0LP  
UK 
SAG: Collection of Algal Cultures  
Inst. Plant Physiology  
University of Göttingen  
Nicholausberger Weg 18  
D-37073 Göttingen  
GERMANY  
UTEX Culture Collection of Algae  
Sector of Molecular, Cellular and Developmental Biology  
School of Biological Sciences  
The University of Texas at Austin  
Austin, Texas 78712  
USA ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 969
 
Външен  вид и характеристики  на препоръчваните  видове  
P. subcapitata D. subspicatus N. pelliculosa A. flos-aquae S. leopoliensis  
Външен  вид Извити , 
усукани  
едноклетъчни  Овални , 
повечето  
едноклетъчни  Пръчици  Вериги  от 
овални  
клетки  Пръчици  
Размери  (L × W) μm 8—14 × 2—3 7—15 × 3—12 7,1 × 3,7 4,5 × 3 6 × 1 
Клетъчен  обем  (μm 3 /клетка ) 40—60 (  1 ) 60—80 (  1 ) 40—50 (  1 ) 30—40 (  1 ) 2,5 (  2 ) 
Сухо  тегло  на клетката  (mg/ 
клетка ) 2—3 × 10  –8 3—4 × 10  –8 3—4 × 10  –8 1—2 × 10  –8 2—3 × 10  –9 
Скорост  на растеж  ( 3 ) (ден  –1 ) 1,5—1,7 1,2—1,5 1,4 1,1—1,4 2,0—2,4  
( 1 ) Измерено  с електронен  брояч  на частици . 
( 2 ) Изчислено  от размерите . 
( 3 ) Най-често  наблюдавана  скорост  на растеж  в среда  на ОИСР  при интензитет  на светлината  приблизително  70 μE· m  –2 ·s –1 и 21 °C.  
Специфични  препоръки  за култивиране  и работа  с препоръчаните  
видове  за изпитване  
Pseudokirchneriella subcapitata и Desmodesmus subspicatus  
Тези  зелени  водорасли  като цяло  се поддържат  лесно  в различни  среди  за 
култури . Информация  относно  подходящите  среди  е на разположение  от 
колекциите  с култури . Клетките  обикновено  са единични  и измерването  
на плътността  на клетките  може  лесно  да се извърши  с помощта  на 
електронен  брояч  на частици  или микроскоп . 
Anabaena flos-aquae  
Може  да се използват  различни  среди  за растеж  за запазване  на изходната  
култура . Особено  важно  е да се избягва  възможността  партидна  култура  да 
прескочи  логаритмичната  фаза  на растеж  при обновяване ; възстановяването  
на този етап е трудно . 
Anabaena flos-aquae  развива  агрегати  от свързани  помежду  си вериги  от 
клетки . Размерите  на тези агрегати  може  да варират  в зависимост  от 
условията  за култивиране . Може  да e необходимо  тези агрегати  да се 
прекъснат  при преброяване  с микроскоп  или електронен  брояч  на частици  
за определяне  на биомасата . 
Може  да се използва  обработване  с ултразвук  на подпробите  за прекъсване  
на веригите , за да се намалят  разминаванията  при преброяването . По- 
дългата  обработка  с ултразвук  от необходимата  за накъсването  на 
веригите  за да станат  те с по-малка  дължина , може  да разруши  клетките . 
Интензивността  на обработката  с ултразвук  и нейната  продължителност  
трябва  да са идентични  за всяка  третирана  проба . 
Пребройте  достатъчно  полета  върху  хемоцитометъра  (най-малко  400 
клетки ), за компенсиране  на разминаванията . Това  ще подобри  
надеждността  на определянето  на плътността  с микроскоп . 
Може  да се използва  електронен  брояч  на частици  за определяне  на общия  
обем  на клетките  на Anabaena след  прекъсването  на клетъчните  вериги  чрез 
внимателна  обработка  с ултразвук . Енергията  на ултразвука  при 
обработката  трябва  да се регулира , за да се избегне  разрушаването  на 
клетките . 
Използвайте  вихров  миксер  или подобен  подходящ  метод , за да сте 
сигурни , че суспензията  на водорасли , използвана  за инокулиране  на 
съдовете  за изпитване , е добре  разбъркана  и хомогенна . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 970
 
Съдовете  за изпитване  следва  да се поставят  върху  въртящ  се кръгово  или 
възвратно -постъпателен  шутел -апарат  при около  150 оборота  в минута . 
Алтернативно  може  да се използва  непрекъснато  разбъркване  за намаляване  
на тенденцията  при Anabaena да образува  бучки . Ако се получи  образуване  
на бучки , трябва  да се внимава  да се вземат  представителни  проби  за 
измервания  на биомасата . Може  да е необходимо  енергично  разбъркване  
за раздробяване  на бучките  от водорасли  преди  вземането  на проби . 
Synechococcus leopoliensis  
Може  да се използват  различни  среди  за отглеждане  при съхраняването  на 
изходната  култура . Информация  относно  подходящите  среди  е налична  от 
колекциите  с култури . 
Synechococcus leopoliensis  расте  като единични  пръчковидни  клетки . 
Клетките  са много  малки , което  усложнява  използването  на броенето  с 
микроскоп  за измервания  на биомасата . От полза  са електронни  броячи  
на частици , оборудвани  за броене  на частици  до размери  от приблизително  
1 μm. Флуоресцентните  измервания  in vitro  също  са приложими . 
Navicula pelliculosa  
Може  да се използват  различни  среди  за отглеждане  при съхраняването  на 
изходната  култура . Информация  относно  подходящите  среди  е налична  от 
колекциите  с култури . Отбележете , че в средата  е нужен  силикат . 
Navicula pelliculosa  може  да образува  агрегати  при определени  условия  за 
отглеждане . Поради  производството  на липиди , клетките  на водораслите  
понякога  проявяват  тенденция  за натрупване  в повърхностен  слой . При 
такива  обстоятелства  трябва  да се предприемат  специални  мерки , когато  
се вземат  подпроби  за определяне  на биомасата , за да се вземат  предста­  
вителни  проби . Може  да е нужно  енергично  разбъркване , например  с 
използване  на вихров  миксер . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 971
 
Допълнение  2 
Среда  на растеж  
Може  да се използва  една  от следните  две среди  на растеж : 
Среда  ОИСР : оригиналната  среда  на ОИСР  TG 201, също  съгласно  
ISO 8692  
US. EPA среда  на AAP, също  съгласно  ASTM.  
При приготвянето  на тези среди  следва  да се използват  реактив  или 
химикал  с високоаналитични  качества  и дейонизирана  вода . 
Състав  на средата  на AAP (US. EPA) и на средата  на ОИСР  TG 201  
Компонент  EPA ОИСР  
mg/l mM mg/l mM  
NaHCO  3 15,0 0,179 50,0 0,595 
NaNO  3 25,5 0,300 
NH  4 Cl 15,0 0,280 
MgCl  2 ·6(H  2 O) 12,16 0,0598 12,0 0,0590 
CaCl  2 ·2(H  2 O) 4,41 0,0300 18,0 0,122 
MgSO  4 ·7(H  2 O) 14,6 0,0592 15,0 0,0609 
K 2 HPO  4 1,044 0,00599 
KH  2 PO 4 1,60 0,00919 
FeCl  3 ·6(H  2 O) 0,160 0,000591 0,0640 0,000237 
Na 2 EDTA·2(H  2 O) 0,300 0,000806 0,100 0,000269 (*) 
H 3 BO 3 0,186 0,00300 0,185 0,00299 
MnCl  2 ·4(H  2 O) 0,415 0,00201 0,415 0,00210 
ZnCl  2 0,00327 0,000024 0,00300 0,0000220 
CoCl  2 ·6(H  2 O) 0,00143 0,000006 0,00150 0,00000630 
Na 2 MoO  4 ·2(H  2 O) 0,00726 0,000030 0,00700 0,0000289 
CuCl  2 ·2(H  2 O) 0,000012 0,00000007 0,00001 0,00000006 
pH 7,5 8,1  
(*) Моларното  отношение  на ЕДТА  към желязото  с малко  надхвърля  единица . Това  предотвратява  
утаяването  на желязото  и същевременно  свежда  до минимум  образуването  на комплекси  от йони  
на тежки  метали . 
При изпитването  с диатомеята  Navicula pelliculosa  и към двете  среди  трябва  
да се добави  Na  2 SiO  3 ·9H  2 О за получаване  на концентрация  от 1,4 mg Si/l.  
Стойността  на pH се получава  при равновесие  между  карбонатната  система  
на средата  и парциалното  налягане  на CO  2 в атмосферния  въздух . Приблиз­  
ителното  съотношение  между  pH при 25 °C и моларната  концентрация  на 
бикарбонатната  система  е: 
pH eq = 11,30 + log [HCO  3 ] ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 972
 
С 15 mg NaHCO  3 /l, pH  eq = 7,5 (среда  на US. EPA), а с 50 mg NaHCO  3 /l, 
pH eq = 8,1 (среда  на ОИСР ). 
Елементен  състав  на изпитваните  среди  
Елемент  EPA ОИСР  
mg/l mg/l  
C 2,144 7,148 
N 4,202 3,927 
P 0,186 0,285 
K 0,469 0,459 
Na 11,044 13,704 
Ca 1,202 4,905 
Mg 2,909 2,913 
Fe 0,033 0,017 
Mn 0,115 0,115  
Приготвяне  на средата  на ОИСР  
Хранително  вещество  Концентрация  в изходния  разтвор  
Изходен  разтвор  1: макронутриенти  
NH  4 Cl 
MgCl  2 ·6H  2 O 
CaCl  2 ·2H  2 O 
MgSO  4 ·7H  2 O 
KH  2 PO 4 1,5 g·l  –1 
1,2 g·l  –1 
1,8 g·l  –1 
1,5 g·l  –1 
0,16 g·l  –1 
Изходен  разтвор  2: желязо  
FeCl  3 ·6H  2 O 
Na 2 EDTA·2H  2 O 64 mg·l  –1 
100 mg·l  –1 
Изходен  разтвор  3: микроелементи  
H 3 BO 3 
MnCl  2 ·4H  2 O 
ZnCl  2 
CoCl  2 ·6H  2 O 
CuCl  2 ·2H  2 O 
Na 2 MoO  4 ·2H  2 O 185 mg·l  –1 
415 mg·l  –1 
3 mg·l  –1 
1,5 mg·l  –1 
0,01 mg·l  –1 
7 mg·l  –1 
Изходен  разтвор  4: бикарбонат  
NaHCO  3 50 g·l  –1 
Na 2 SiO  3 ·9H  2 0 
Стерилизирайте  изходните  разтвори  с мембранно  филтриране  (среден  
диаметър  на порите  0,2 μm) или чрез обработка  в автоклав  (120 °C, 
15 минути ). Съхранявайте  разтворите  на тъмно  при 4 °C.  
Не обработвайте  изходни  разтвори  2 и 4 в автоклав , а ги стерилизирайте  с 
мембранно  филтриране . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 973
 
Пригответе  средата  на растеж  чрез добавяне  на съответния  обем  изходен  
разтвор  от 1 до 4 към вода : 
Добавете  до 500 ml стерилизирана  вода : 
— 10 ml от изходен  разтвор  1 
— 1 ml от изходен  разтвор  2 
— 1 ml от изходен  разтвор  3 
— 1 ml от изходен  разтвор  4 
Допълнете  до 1 000 ml със стерилизирана  вода  
Оставете  достатъчно  време  за постигане  на равновесие  на средата  с 
атмосферния  CO  2 , при необходимост  чрез барботиране  със стерилен  
филтриран  въздух  в течение  на няколко  часа. 
Приготвяне  на средата  на AAP  
A1.1. Добавете  1 mL от всеки  изходен  разтвор  в A1.2.1 — A1.2.7 към 
приблизително  900 mL дейонизирана  или дестилирана  вода  и след  
това разредете  до 1 L.  
A1.2. Изходните  разтвори  с макронутриенти  се правят  чрез разтварянето  
на следните  съставки  в 500 mL дейонизирана  или дестилирана  
вода . Реактивите  A1.2.1, A1.2.2, A1.2.3 и A1.2.4 могат  да се 
комбинират  в един  изходен  разтвор . 
A1.2.1.  NaNO  3 -12,750 g.  
A1.2.2.  MgCL  2 ·6H  2 O -6,082 g.  
A1.2.3.  CaCl  2 ·2H  2 O -2,205 g.  
A1.2.4.  Изходен  разтвор  с микронутриенти  — (вижте  A1.3).  
A1.2.5.  MgSO  4 ·7H  2 O -7,350 g.  
A1.2.6.  K  2 HPO  4 -0,522 g.  
A1.2.7.  NaHCO  3 -7,500 g.  
A1.2.8.  Na  2 SiO  3 ·9H  2 O — вижте  забележка  A1.1.  
Забележка  A1.1  — Използвайте  само  видове  диатомеи  за тестване . 
Може  да се добавят  директно  (202,4 mg) или във вид на изходен  
разтвор  за получаването  на крайна  концентрация  в средата  от 
20 mg/L Si.  
A1.3. Изходният  разтвор  с микронутриенти  се прави  чрез разтваряне  на 
следните  съставки  в 500 mL дейонизирана  или дестилирана  вода : 
A1.3.1.  H  3 BO 3 -92,760 mg.  
A1.3.2.  MnCl  2 ·4H  2 O -207,690 mg.  
A1.3.3.  ZnCl  2 -1,635 mg.  
A1.3.4.  FeCl  3 ·6H  2 O -79,880 mg.  
A1.3.5.  CoCl  2 ·6H  2 O -0,714 mg.  
A1.3.6.  Na  2 MoO  4 ·2H  2 O -3,630 mg.  
A1.3.7.  CuCl  2 ·2H  2 O -0,006 mg.  
A1.3.8.  Na  2 EDTA·2H  2 O -150,000 mg.  
[Динатриев  (етилендинитрило ) тетраацетат ]. ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 974
 
A1.3.9.  Na  2 SeO  4 ·5H  2 O -0,005 mg Вижте  забележка  A1.2.  
Забележка  A1.2  — Използвайте  само  в среда  за изходни  култури  
на вида  диатомея . 
A1.4. Регулирайте  pH до 7,5 ± 0,1 с 0,1 N или 1,0 N NaOH или HCl.  
A1.5. Филтрирайте  средите  в стерилен  контейнер  през 0,22-μm 
мембранен  филтър , ако ще се използва  брояч  на частици  или 
през 0,45-μm филтър , ако няма  да използвате  брояч  на частици . 
A1.6. Съхранявайте  средата  на тъмно  при приблизително  4 °C до 
влизане  в употреба . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 975
 
Допълнение  3 
Пример  на процедура  за култивиране  на водорасли  
Общи  наблюдения  
Целта  на култивирането  въз основа  на следната  процедура  е да се получат  
култури  на водорасли  за изпитвания  на токсичност . 
Трябва  да се използват  подходящи  методи , за да се гарантира , че културите  
на водорасли  не са заразени  с бактерии . Желателни  са култури  с отсъствие  
на чужди  организми , но трябва  да бъдат  въведени  и използвани  едновидови  
водораслови  култури . 
Всички  операции  трябва  да се извършват  при стерилни  условия , за да се 
избегне  замърсяването  с бактерии  и други  водорасли . 
Оборудване  и материали  
Вижте  в метод  на изпитване : апаратура . 
Процедури  за получаване  на култури  на водорасли  
Приготвяне  на хранителни  разтвори  (среди ): 
Всички  хранителни  соли  на средата  се приготвят  като концентрирани  
изходни  разтвори  и се съхраняват  на тъмно  и хладно . Тези  разтвори  се 
стерилизират  чрез филтриране  или обработка  в автоклав . 
Средата  се приготвя  чрез добавяне  на правилното  количество  от изходния  
разтвор  към стерилна  дестилирана  вода , като се внимава  да не възникнат  
инфекции . За твърда  среда  се добавя  0,8 процента  агар. 
Изходна  култура : 
Изходните  култури  са малки  култури  на водорасли , които  периодично  се 
прехвърлят  в прясна  среда , за да играят  ролята  на първоначален  материал  за 
изпитване . Ако културите  не се използват  периодично , те се разполагат  на 
ивици  в наклонени  тръбички  с агар. Те се прехвърлят  в прясна  среда  най- 
малко  веднъж  на всеки  два месеца . 
Изходните  култури  се отглеждат  в конични  колби , съдържащи  подходящата  
среда  (обем  около  100 ml). Когато  водораслите  се инкубират  при 20 °C при 
непрекъснато  осветяване  е необходимо  преместване  веднъж  седмично . 
При преместването  известно  количество  от „старата “ култура  се прехвърля  
със стерилни  пипети  в колба  с прясна  среда , така че при бързорастящите  
видове  началната  концентрация  е около  100 пъти  по-малка , отколкото  при 
старата  култура . 
Скоростта  на растеж  на вида  може  да се определи  от кривата  на растежа . 
Ако тя е известна , е възможно  да се оцени  плътността , при която  културата  
следва  да се прехвърли  в нова  среда . Това  трябва  да се направи  преди  
културата  да достигне  фазата  на смърт . 
Предкултура : 
Предкултурата  е предназначена  да осигури  известно  количество  водорасли , 
подходящи  за инокулацията  на култури  за изпитване . Предкултурата  се 
инкубира  при условията  на изпитването  и се използва  докато  все още 
расте  експоненциално , обикновено  след  инкубационен  период  от 2 до 4 
дни. Когато  културите  на водорасли  съдържат  деформирани  или 
анормални  клетки , те трябва  да се изхвърлят . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 976
 
Допълнение  4 
Анализ  на данните  чрез  нелинейна  регресия  
Общи  съображения  
Реакцията  при изпитването  на водорасли  и други  микробиални  изпитвания  
на растеж  — растеж  на биомаса  — по своя  характер  е непрекъсната  или 
метрична  променлива  — скоростта  на процеса , ако се използва  скоростта  на 
растеж  и нейният  интеграл  във времето , ако е избрана  биомасата . И двете  се 
отнасят  към съответната  средна  реакция  на неекспонирани  повторни  
контролни  проби , които  дават  максимална  реакция  при наложените  
условия  — със светлината  и температурата  като основни  определящи  
фактори  при изпитването  на водорасли . Системата  е разпределена  или 
хомогенна  и биомасата  може  да се разглежда  като постоянен  параметър , 
без да се вземат  предвид  отделните  клетки . Разпределението  на променли­  
востта  на типа  реакция  за такава  система  е свързано  единствено  с 
експериментални  фактори  (типично  описвани  чрез нормален  логаритъм  
или нормално  разпределение  на грешки ). Това  е противоположно  на 
типичните  реакции  на биологичния  тест с количествени  данни , за които  
допустимото  отклонение  (обикновено  с биномно  разпределение ) на 
отделните  организми  често  се приема  за доминиращата  компонента  на 
променливостта . Реакциите  на контролните  проби  тук са нулево  или 
фоново  ниво . 
В неусложнените  ситуации  нормализираната  или относителната  реакция , r, 
намалява  монотонно  от 1 (нулево  потискане ) до 0 (100- процентно  
потискане ). Отбележете , че за всички  реакции  е налице  съответстваща  
грешка  и че очевидно  отрицателни  потискания  могат  да се изчисляват  
като резултат  от случайна  грешка . 
Регресионен  анализ  
Модели  
Регресионният  анализ  има за цел да опише  количествено  кривата  конце­  
нтрация —реакция  във формата  на математическа  регресионна  функция  
Y = f (C) или по-често  F (Z), където  Z = log C. Използването  на 
обратната  функционална  зависимост  C = f  –1 (Y) позволява  да се изчислят  
числата  за EC  x , включително  EC  50 , EC  10 и EC  20 , както  и техните  95 % 
доверителни  граници . Доказано  е, че няколко  прости  математически  функц­  
ионални  форми  успешно  описват  съотношението  концентрация — реакция , 
получено  при изпитванията  за потискане  растежа  на водорасли . Функциите  
включват  например  логистичното  уравнение , несиметричното  уравнение  на 
Weibull и функцията  на разпределението  на нормалния  логаритъм , всички  
от които  са сигмоидални  криви , асимптотично  клонящи  към единица  за 
C → 0 и към нула  за C → безкрайност . 
Използването  на модели  с непрекъсната  прагова  функция  (например  
моделът  на Koyman „ за потискане  на растежа  на популация “ — Kooijman 
et al., 1996 г.) е предложено  наскоро  или се приема  като алтернатива  на 
асимптотичните  модели . Този  модел  предполага  липсата  на ефекти  при 
концентрации  под определен  праг , EC0+, който  се оценява  чрез екстрап­  
олация  на съотношението  концентрация — реакция  до пресичането  с оста на 
концентрацията  с помощта  на проста  непрекъсната  функция , която  не е 
разграничима  в началната  точка . 
Обърнете  внимание , че анализът  може  да бъде  просто  минимизиране  на 
суми  от остатъчни  квадрати  (като се приема  постоянна  променливост ) 
или претеглените  квадрати , ако хетерогенността  на променливостта  е 
компенсирана  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 977
 
Процедура  
Процедурата  може  да се опише  както  следва : изберете  подходящо  функц­  
ионално  уравнение , Y = f (C) и го съгласувайте  с данните  чрез нелинейна  
регресия . За предпочитане  е да използвате  измерванията  от всяка  отделна  
колба , а не средните  стойности  на повторните  проби , за да извлечете  
колкото  е възможно  повече  информация  от данните . От друга  страна , ако 
променливостта  е голяма , практическият  опит  предполага , че средните  
стойности  на повторните  проби  могат  да доведат  до по-устойчива  математ­  
ическа  оценка , по-слабо  повлияна  от произволните  грешки  в данните , 
отколкото  при запазването  на всяка  отделна  точка  с данни . 
Постройте  описващата  крива  и измерените  данни  и проверете  дали  налагането  
на кривата  е подходящо . Анализът  на остатъчни  вещества  може  да е особено  
полезен  инструмент  за тази цел. Ако избраното  функционално  съотношение  
за налагане  на реакцията  на концентрация  не описва  добре  цялата  крива  или 
съществена  част от нея, като например  реакцията  при ниски  концентрации , 
изберете  друга  възможност  за налагане  на кривата  — например  несиметрична  
крива  като функцията  на Weibull вместо  симетрична . Отрицателните  
потискания  могат  да представляват  проблем , например  с функцията  на 
разпределение  на нормалния  логаритъм , което  също  изисква  алтернативна  
функция  на регресия . Не се препоръчва  да се обозначава  с нула  или малка  
положителна  стойност  на такива  отрицателни  стойности , защото  това 
изкривява  разпределението  на грешките . Може  да е подходящо  да правите  
отделни  налагания  на частите  от кривата  като например  частта  на слабо  
потискане , за да оцените  стойностите  за EC  low x . Изчислете  от описващото  
уравнение  (чрез „обратно  изчисление “, C = f  –1 (Y), оценките  на характерните  
точки  на EC  x и отчетете  като минимум  оценките  за EC  50 и една  или две за 
EC low x  . Опитът  от практическите  изпитвания  е показал , че точността  на 
изпитването  на водорасли  обикновено  позволява  достатъчно  точна  оценка  
при 10 % ниво  на потискане , ако точките  с данни  са достатъчно  — освен  
ако не възникне  стимулиране  при ниски  концентрации  като фактор  за 
смесване  на ефектите . Точността  на оценката  за EC  20 често  е значително  по- 
добра  от тази на EC  10 , защото  EC  20 обикновено  е разположена  на приблиз­  
ително  линейната  част на централната  крива  на реакция  на концентрация . 
Понякога  може  да е трудно  да се тълкува  EC  10 поради  стимулирането  на 
растежа . Така  че докато  EC  10 обикновено  се получава  с достатъчна  точност , 
препоръчително  е да се отчита  винаги  и EC  20 . 
Тегловни  фактори  
Експерименталната  променливост  в общия  случай  не е постоянна  и типично  
включва  пропорционална  компонента , следователно  има благоприятни  
условия  за рутинно  извършване  на тегловна  регресия . При такъв  анализ  
обикновено  се приема , че тегловните  фактори  са обратнопропорционални  
на променливостта : 
W i = 1/Var(r  i ) 
Много  програми  за регресия  имат  възможност  за анализ  на тегловна  
регресия  с тегловни  фактори , изброени  в таблица . За удобство , тегловните  
фактори  следва  да се нормализират , като се умножат  с n/∑ w i (n е броят  на 
точките  с данни ), така че тяхната  сума  да е равна  на единица . 
Нормализиране  на реакциите  
Нормализирането  чрез средните  стойности  на реакциите  от контролните  
проби  създава  някои  принципни  проблеми  и води  до получаване  на 
твърде  усложнена  структура  на променливост . Когато  реакциите  се 
разделят  на средната  стойност  на реакцията  на контролната  проба , за да 
се получи  процентът  на потискане , се внася  допълнителна  грешка , 
предизвикана  от грешката  в средната  стойност  на контролната  проба . 
Освен  ако тази грешка  не е пренебрежимо  малка , тегловните  фактори  за 
регресията  и доверителните  граници  трябва  да бъдат  коригирани  от 
ковариацията  с контролната  проба  (17). Трябва  да се има предвид , че 
високата  точност  на изчислената  средна  стойност  за реакцията  на 
контролната  проба  е важна  при свеждането  до минимум  на цялостната  
променливост  за относителната  реакция . Тази  променливост  е следната : ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 978
 
индексът  i се отнася  до нивото  i на концентрацията , а индексът  0 — за 
контролните  проби ) 
Y i = относителна  реакция  = r  i /r 0 = 1 — I = f (C  i ) 
с променливост : 
Var (Y  i ) = Var (r  i /r 0 ) ≈ (∂ Y i / ∂ r i ) 2 · Var (r  i ) + (∂ Y i / ∂ r 0 ) 2 ·Var (r  0 ) 
и тъй като 
(∂ Y i / ∂ r i ) = 1/r  0 и (∂ Y i / ∂ r 0 ) = r  i /r 0 2 
с нормално  разпределени  данни  и m i и m 0 повторни  проби : 
Var (r  i ) = σ 2 /m i 
общата  променливост  на относителната  реакция  Y i следователно  става : 
Var (Y  i ) = σ 2 /(r 0 2 m i ) + r  i 2 · σ 2 /r 0 4 m 0 
Грешката  върху  средната  стойност  на контролна  проба  е обрат­  
нопропорционална  на корен  квадратен  от осреднените  стойности  на 
повторните  контролни  проби  и в някои  случаи  може  да се обоснове  
включването  на предишни  статистически  данни , като по този начин  в 
голяма  степен  се намалява  грешката . Алтернативната  процедура  е данните  
да не се нормализират  и да се налагат  абсолютните  стойности  на реакциите , 
включително  данните  от реакциите  на контролните  проби , но като се въведе  
стойността  на реакцията  на контролната  проба  като допълнителен  
параметър , който  се налага  чрез нелинейна  регресия . При използване  на 
обикновеното  уравнение  за регресия  с два параметъра  този метод  изисква  
налагане  на три параметъра  и следователно  се нуждае  от повече  точки  с 
данни  от нелинейната  регресия  върху  данни , които  се нормализират  с 
помощта  на предварително  зададена  реакция  от контролна  проба . 
Обратни  доверителни  интервали  
Изчисляването  на доверителните  интервали  за нелинейна  регресия  чрез 
обратна  оценка  е доста  сложно  и не е налична  стандартна  възможност  в 
обикновените  пакети  от статистически  компютърни  програми . Приблизит­  
елните  доверителни  граници  могат  да бъдат  получени  със стандартните  
програми  за нелинейна  регресия  с нова  параметризация  (Bruce and 
Versteeg, 1992), което  включва  повторно  съставяне  на математическото  
уравнение  с желаните  оценки  на точките , например  EC  10 и EC  50 като 
параметри , които  ще се оценяват . (Нека  функцията  е I = f (α, β, конце­  
нтрация ) и като използваме  дефиниционните  съотношения  f (α, β, 
EC 10 ) = 0,1 и f (α, β, EC  50 ) = 0,5 да заместим  f (α, β, концентрация ) с 
еквивалентна  функция  g (EC  10 , EC  50 , концентрация ). 
По-директно  изчисляване  (Andersen et al, 1998) се извършва  чрез запазване  
на оригиналното  уравнение  и използване  на разлагането  на Taylor към 
средните  стойности  на r i и r 0 . 
Напоследък  станаха  популярни  методите  „boot strap“. Тези  методи  
използват  измерените  данни  и често  вземане  на повторни  извадки , 
насочвано  чрез генератор  на случайни  числа , за оценка  на разпределението  
на емпиричната  променливост . 
Литература  
Kooijman, S.A.L.M.; Hanstveit, A.O.; Nyholm, N. (1996): No-effect concen ­
trations in algal growth inhibition tests. Water Research, 30, 1625—1632.  
Bruce, R.D. and Versteeg, D.J.(1992) A Statistical Procedure for Modelling 
Continuous Ecotoxicity Data. Env. Toxicol. Chem.11, 1485—1494  
Andersen, J.S., Holst, H., Spliid, H., Andersen, H., Baun, A. & Nyholm, N. 
(1998): Continuous ecotoxicological data evaluated relative to a control response. 
Journal of Agricultural, Biological and Environmental Statistics, 3, 405—420.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 979
 
В.4. ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ПРЯКАТА  БИОЛОГИЧНА  РАЗГРА­  
ДИМОСТ  
ЧАСТ  I. ОБЩИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
I.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Описани  са шест  метода , които  позволяват  скрининг  на химични  
вещества  за пряка  биологична  разградимост  в аеробна  водна  
среда : 
а) Метод  за определяне  на разтворен  органичен  въглерод  (DOC) 
чрез скоростта  на отмиране  (метод  В.4-А) 
б) Модифициран  скрининг  метод  на OECD за определяне  на 
DOC чрез скоростта  на отмиране  (метод  В.4-Б) 
в) Метод  за отделяне  на въглероден  диоксид  (СО 2 ) (модиф­  
ициран  метод  на Щурм ) (метод  В.4-В) 
г) Манометрична  респирометрия  (метод  В.4-Г) 
д) Метод  на изолираните  проби  (метод  В.4-Д) 
е) MITI ( Министерство  на международната  търговия  и 
индустрията  — Япония ) (метод  В.4-Е) 
Общите  положения  за всичките  шест  изпитвания  са дадени  в 
част I на метода . Специфичните  детайли  за отделните  методи  
са дадени  в части  II—VII. Приложенията  съдържат  определения , 
формули  и указателен  материал . 
Едно  междулабораторно  сравнително  изпитване , проведено  от 
OECD през 1988 г., показва , че методите  дават  съвместими  
резултати . Един  или друг  от методите  обаче  може  да бъде  
предпочетен  в зависимост  от физичните  характеристики  на 
изпитваното  вещество . 
I.2. ИЗБОР  НА ПОДХОДЯЩИЯ  МЕТОД  
За да се избере  най-подходящият  метод , е необходима  
информация  за разтворимостта , парното  налягане  и адсорбц­  
ионните  характеристики  на химичното  вещество . Следва  да са 
известни  химичната  структура  и формулата , за да се изчисляват  
теоретичните  стойности  и/или да се проверяват  измерените  
стойности  на параметрите , например  ThOD, ThCO  2 , DOC, 
TOC, COD ( вж. приложения  I и II). 
Изпитваните  химични  вещества , които  са разтворими  във вода  
до не по-малко  от 100 mg/l, могат  да бъдат  оценявани  чрез 
всички  методи , при положение  че не са летливи  и не се 
адсорбират . За онези  химични  вещества , които  са трудно  разт­  
ворими  във вода , летливи  или адсорбиращи  се, подходящите  
методи  са показани  в таблица  1. Начинът , по който  се работи  
с трудно  разтворими  във вода  и летливи  химични  вещества , е 
описан  в приложение  III. Умерено  летливите  химични  вещества  
могат  да се изпитват  по метода  за определяне  на органичен  
въглерод  (DOC) чрез скоростта  на отмиране , ако има достатъчно  
въздушно  пространство  в съдовете  (които  следва  да са 
подходящо  затворени ). В този случай  следва  да се постави  и 
абиотична  контрола , за да се вземат  под внимание  всички  
физични  загуби . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 980
 
Таблица  1 
Приложимост  на методите  за изпитване  
Изпитване  Аналитичен  метод  Подходящ  за вещества , които  са: 
трудно  разт­  
ворими  летливи  адсорбиращи  
се 
Определяне  на разтворен  
органичен  въглерод  чрез 
скоростта  на отмиране  Разтворен  органичен  
въглерод  — — +/– 
Модифициран  метод  на 
OECD за определяне  чрез 
скоростта  на отмиране  Разтворен  органичен  
въглерод  — — +/– 
Метод  с отделяне  на CO  2 Респирометрия : отделяне  
на СО 2 + — + 
Манометрична  
респирометрия  Манометрична  респиром­  
етрия : потребление  на 
кислород  + +/– + 
Метод  на изолираните  
проби  Респирометрия : разтворен  
кислород  +/– + + 
MITI Респирометрия : 
потребление  на кислород  + +/– +  
При тълкуването  на получените  резултати  е необходима  
информация  за чистотата  или относителните  дялове  на 
основните  компоненти  на изпитвания  материал , особено  когато  
резултатите  са ниски  или гранични . 
Информацията  за токсичността  на химичното  вещество  спрямо  
бактерии  (приложение  IV) може  да бъде  особено  полезна  при 
избирането  на подходящи  концентрации  за изпитване  и може  да 
бъде  особено  важна  за правилното  тълкуване  при ниски  
стойности  на биологичното  разграждане . 
I.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
За да се провери  процедурата , веществата  за сравнение , които  
изпълняват  критериите  за биоразградимост , се изпитват  чрез 
поставяне  в съответна  колба , успоредно  на хода  на нормалното  
изпитване . 
Подходящи  химични  вещества  са анилин  (прясно  дестилиран ), 
натриев  ацетат  и натриев  бензоат . Всички  тези сравнителни  
вещества  се разграждат  по изброените  методи , дори  когато  
нарочно  не е добавен  инокулант . 
Смята  се, че следва  да се търси  сравнително  вещество , което  е 
лесно  биоразградимо , но изисква  прибавяне  на инокулант . 
Предлаган  е калиев  хидрогенфталат , но са необходими  повече  
доказателства  за това вещество , за да може  да бъде  прието  като 
сравнително . 
При респирометричните  изпитвания  азот-съдържащите  
съединения  могат  да повлияват  върху  потреблението  на 
кислород  поради  нитрификацията  (виж приложения  II и IV).  
I.4. ПРИНЦИПИ  НА МЕТОДИТЕ  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Разтвор  или суспензия  на изпитваното  вещество  в минерална  среда  
се инокулира  и се инкубира  при аеробни  условия  на тъмно  или при 
дифузна  светлина . Количеството  на DOC в изпитвания  разтвор , 
дължащо  се на инокуланта , следва  да се поддържа  колкото  може  
по-ниско  в сравнение  с количеството  на DOC, дължащо  се на 
изпитваното  вещество . Ендогенната  активност  на инокуланта  се 
отчита  чрез залагане  на контролна  проба  с инокулант , но без 
изпитваното  вещество , въпреки  че ендогенната  активност  на 
клетките  в присъствие  на веществото  няма  да съвпадне  точно  с 
ендогенната  контрола . Успоредно  се залага  и вещество  за 
сравнение , за да се провери  протичането  на процедурите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 981
 
Най-общо  разграждането  се проследява  чрез определяне  на 
параметри , като DOC, продукция  на СО 2 и потребление  на 
кислород , като измерванията  се правят  на достатъчно  чести  
интервали , за да може  да се отчетат  началото  и краят  на 
биоразграждането . С автоматични  респирометри  измерванията  
са непрекъснати . DOC понякога  се измерва  като допълнение  
на други  параметри , но това обикновено  се прави  само  в 
началото  и в края  на изпитването . Може  да се използва  и спец­  
ифичен  химичен  анализ , за да се оцени  първоначалното  
разграждане  на изпитваното  вещество  и да се определи  конце­  
нтрацията  на всички  образувани  междинни  вещества  (задълж­  
ително  при изпитването  по МITI). 
Нормално  изпитването  продължава  28 дни. Изпитванията  могат  
да завършат  и преди  28 дни, т.е. тогава , когато  кривата  на 
биологичното  разграждане  е достигнала  плато  при поне  3 
определяния . Изпитванията  могат  да продължат  и повече  от 28 
дни, когато  кривата  показва , че биоразграждането  е започнало , 
но платото  не е достигнато  за 28 дни. 
I.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
I.5.1.  Възпроизводимост  
Поради  природата  на биоразграждането  и смесените  
бактериални  популации , използвани  като инокулант , 
определянето  следва  да се прави  най-малко  в две повторения . 
От опит  се знае, че колкото  по-високи  концентрации  
микроорганизми  се прибавят  първоначално  към изпитваната  
среда , толкова  по-малки  са разликите  между  повторенията . 
Кръгови  (междулабораторни ) изпитвания  са показали  също  
така, че може  да има големи  различия  в резултатите , получени  
от различни  лаборатории , но нормално  се получава  добро  
съвпадение  при лесно  биоразградими  съединения . 
I.5.2.  Валидност  на изпитването  
Едно  изпитване  се смята  за валидно , ако при повторенията  
разликата  между  най-ниската  и най-високата  стойност  при 
отстраняване  на изпитваното  химично  вещество  на платото  в 
края  на теста  или в края  на 10-дневен  период  е по-малка  от 
20 % и ако процентното  разграждане  на сравнителното  
вещество  е достигнало  равнището  на биоразграждане  за 14 
дни. Ако което  и да е от тези условия  не е изпълнено , 
изпитването  следва  да бъде  повторено . Поради  строгостта  на 
методите  ниските  стойности  не винаги  означават , че 
изпитваното  вещество  не се разгражда  в естествени  условия , 
но показват , че е необходима  повече  работа , за да се установи  
биоразграждането . 
Ако при едно  изпитване  за токсичност , съдържащо  както  
изпитваното  вещество , така и веществото  за сравнение , се 
получи  по-малко  от 35 % разграждане  (на основата  на DOC) 
или по-малко  от 25 % (на основата  на ThOD или ТhСО 2 ) за 
14 дни, изпитваното  вещество  може  да се приеме  като 
инхибитор  (вж. приложение  IV). Тестовите  серии  следва  да 
бъдат  повторени , използвайки  по възможност  по-ниски  конце­  
нтрации  на изпитваното  вещество  при по-висока  концентрация  
на инокуланта , но не повече  от 30 mg частици /литър . 
I.6. ОБЩИ  ПРОЦЕДУРИ  И ПОДГОТОВКА  
Общите  условия , приложими  към изпитванията , са обобщени  в 
таблица  2. Апаратурата  и другите  експериментални  условия , 
приложими  специфично  за всеки  индивидуален  тест, са 
описани  по-долу  под заглавието  на съответния  тест. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 982
 
Таблица  2 
Условия  на изпитването  
Изпитване  Определяне  на 
DOC чрез 
скоростта  на 
отмиране  Метод  за 
отделяне  на 
СО 2 Манометрична  
респирометрия  Модифициран  
скрининг  
метод  на 
OECD Метод  на 
изолирани  те 
проби  MITI (I)  
Конце­  
нтрация  на 
изпитваното  
вещество  
като 
mg/l 100 2—10 100 
mg DOC/l 10—40 10—20 10—40 
mg ThOD/l 50—100 5—10 
Конце­  
нтрация  на 
инокуланта  
(в броя  
клетки /1, 
приблиз­  
ително ) ≤ 30 mg/l суспендирани  частици  
или ≤ 100 ml отток  (изходяща  вторична  
вода )/1 
(10 7 —10  8 ) 0,5 ml 
вторичен  
отток /l 
(10 5 ) ≤5ml 
отток /l 
(10 4 —10  6 ) 30 mg/l 
суспендиран  
и частици  
(10 7 —10  8 ) 
Конце­  
нтрация  на 
елементите  в 
минералната  
среда  (в mg/l) 
Р 116 11,6 29 
N 1,3 0,13 1,3 
Na 86 8,6 17,2 
K 122 12,2 36,5 
Mg 2,2 2,2 6,6 
Са 9,9 9,9 29,7 
Fe 0,05—0,1 0,05—0,1 0,15 
pH 7,4 + 0,2 За предп­  
очитане  7.0 
Температура  22 + 2  o С 25 + 1  o С 
DOC = разтворен  органичен  въглерод  ThOD = теоретично  
потребление  на 
кислород  SS = суспендирани  
частици  
I.6.1.  Вода  за разреждане  
Използва  се дестилирана  или дейонизирана  вода , несъдържаща  
инхибиращи  концентрации  на токсични  вещества  (например  
Си ++ йони ). Водата  трябва  да съдържа  не повече  от 10 % от 
органичния  въглерод , внесен  с изпитвания  материал . Високата  
чистота  на водата  за изпитването  е необходима , за да се 
елиминират  високи  стойности  на контролната  проба . 
Замърсяването  може  да се дължи  на присъщи  онечиствания , а 
също  така на йонообменните  смоли  и разграден  материал  от 
бактерии  или водорасли . За всяка  серия  изпитвания  се 
използва  само  една  партида  вода , предварително  проверена  
чрез анализ  за DOC. Такава  проверка  не е необходима  при 
изпитването  по метода  на изолираните  проби , но потреблението  
на кислород  на водата  трябва  да е ниско . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 983
 
I.6.2.  Изходни  разтвори  на минерални  компоненти  
За да се направят  разтворите  за изпитване , се приготвят  изходни  
разтвори  с определени  концентрации  на минералните  
компоненти . За методите : определяне  на DOC чрез скоростта  
на отмиране , модифициран  скрининг  на ОИСР , отделяне  на 
СО 2 , манометрична  респирометрия  и този на изолираните  
проби  могат  да бъдат  използвани  описаните  по-долу  изходни  
разтвори  (с различни  фактори  на разреждане ). 
Факторите  на разреждане , а за изпитването  по МIТI — и спец­  
ифичното  приготвяне  на минералната  среда , са дадени  под 
заглавията  на специфичните  методи  за изпитване . 
Изходни  разтвори : 
Приготвят  се следните  изходни  разтвори , като се използват  
химични  вещества  със степен  ЧЗА („чист  за анализ “). 
а) Монокалиев  дихидрогенортофосфат , КН 2 РО 4 8,50 g 
Дикалиев  монохидрогенортофосфат , K 2 НРО  4 21,75 g 
Динатриев  монохидрогенортофосфат  дихидрат , 
Nа 2 НРО  4 .Н 2 О 33,40 g 
Амониев  хлорид , NН 4 Сl 0,50 g 
Разтварят  се във вода  и се долива  до 1 литър . 
Стойността  на рН на разтвора  следва  да 
бъде  7,4. 
б) Калциев  хлорид , безводен , СаСl 2 27,50 g 
или калциев  хлорид  дихидрат , СаСl 2 , 2Н 2 О 36,40 g 
Разтварят  се във вода  и се долива  до 1 литър . 
в) Магнезиев  сулфат  хептахидрат , МgЅО 4 .7Н 2 О 22,50 g 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър . 
г) железен (Ш) хлорид  хексахидрат , FеСl 3 .6Н 2 О 0,25g 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър . 
Забележка : За да се избегне  приготвянето  на този разтвор  
непосредствено  преди  употреба , прибавя  се една  капка  конце­  
нтрирана  НС1 или 0,4 g динатриева  сол на етилендиаминот­  
етраоцетна  киселина  (EDTA) на литър . 
I.6.3.  Изходни  разтвори  на химични  вещества  
Например , разтварят  се 1—10 g, както  е подходящо , от 
изпитваното  или сравнителното  вещество  в дейонизирана  вода  
и се доливат  до 1 l, ако разтворимостта  превишава  1 g/1. В 
противен  случай  се приготвят  изходните  разтвори  в минерална  
среда  или веществото  се добавя  направо  към минералната  среда . 
При работа  с по-малко  разтворими  химични  вещества  вижте  
приложение  III, но при метода  на MITI (метод  В.4-Е) не могат  
да се използват  нито  разтворители , нито  емулгатори . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 984
 
I.6.4.  Инокулант  (култура  от микроорганизми ) 
Инокулантът  може  да произхожда  от различни  източници : 
активна  утайка , пречистена  отпадъчна  вода  (нехлорирана ), 
повърхностни  води  и почви  или смес  от всичко  това. Ако при 
методите  за изпитване  за определяне  на DOC чрез скоростта  на 
отмиране  и при методите  за отделяне  на СО 2 и манометрична  
респирометрия  се използва  активна  утайка , тя трябва  да е взета  
от пречиствателна  станция  или от лабораторно  звено , които  
получават  предимно  битови  отпадъчни  води . Опитът  показва , 
че инокуланти  от други  източници  дават  по-голямо  разсейване  
в резултатите . За изпитванията  по модифицирания  метод  на 
ОИСР  и метода  на изолираните  проби  са необходими  по- 
разредени  инокуланти  без утаечни  флокули  и като източник  се 
предпочита  оттокът  от градска  станция  за пречистване  на 
отпадъчни  води  (ГСПОВ ) или от лабораторно  звено . За 
изпитването  по метода  на МIТI инокулантът  се извлича  от 
смесени  източници , както  е описано  под заглавието  на 
настоящото  специфично  изпитване . 
I.6.4.1.  Инокулант  от активна  утайка  
Взема  се свежа  проба  от активната  утайка  от басейна  за 
аериране  на една  ГСПОВ  или от лабораторно  звено , които  
преработват  предимно  битови  отпадъчни  води . Ако е необ­  
ходимо , се отстраняват  твърдите  частици  чрез филтруване  през 
фино  сито  и след  това утайката  се съхранява  при аеробни  
условия . 
Друга  възможност  е утайката  да се остави  да се утаи  или да се 
центрофугира  (например  при 1100 g в продължение  на 10 min) 
след  премахване  на по-грубите  частици . Отдекантира  се 
супернатантата . Утайката  може  да се промива  с минерална  
среда . Концентрираната  утайка  се разрежда  с минерална  среда  
до концентрация  3—5 g суспендирани  вещества  на литър  и се 
аерира , колкото  се изисква . 
Утайката  трябва  да се вземе  от обикновена  добре  работеща  
пречиствателна  станция . Ако утайката  трябва  да бъде  взета  от 
пречиствателна  станция , работеща  при висока  скорост  на 
обработка , или има съмнение , че съдържа  инхибитори , тя 
трябва  да се промие . Ресуспендираната  утайка  се утаява  или 
центрофугира  след  разбъркване , отлива  се супернатантата  и 
промитата  с нова  минерална  среда  утайка  отново  се ресус­  
пендира . Тази  процедура  се повтаря , докато  се прецени , че 
утайката  е свободна  от странични  вещества  или инхибитор . 
След  достигане  на пълно  суспендиране  или при необработена  
утайка , преди  употреба  се отделя  проба  за определяне  на 
сухото  тегло  на суспендираните  частици . 
Друга  възможност  е да се хомогенизира  активната  утайка  
(3—5 g суспендирани  частици /l). Утайката  се обработва  в 
механичен  хомогенизатор  в продължение  на 2 min при средна  
скорост . Хомогенизираната  утайка  се утаява  за 30 min или по- 
дълго , ако е необходимо , и течността  се отлива , а утайката  се 
използва  като посявка  (инокулант ) след  10-кратно  разреждане  в 
минерална  среда . 
I.6.4.2.  Други  източници  на инокуланти  
Инокулантите  могат  да произхождат  от оттока  на ГСПОВ  или 
от лабораторно  звено , получаващи  предимно  битови  отпадъчни  
води . Взема  се прясна  проба  и се съхранява  при аеробни  
условия  по време  на транспортирането . Оставя  се да се утаи  
за 1 час или се филтрува  през груб  хартиен  филтър , а 
отлятата  течност  или филтратът  се запазват  при аеробни  
условия , докогато  се изисква . От този тип култура  могат  да се 
използват  до 100 ml на литър  среда . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 985
 
Друг  един  източник  на инокулант  са повърхностните  води . В 
този случай  се взема  проба  от подходяща  повърхностна  вода , 
например  речна , езерна , и се съхранява  при аеробни  условия , 
докато  се изисква . Ако е необходимо , инокулантът  се конце­  
нтрира  чрез филтруване  или центрофугиране . 
I.6.5.  Предварителна  подготовка  на микроорганизмите  
Микроорганизмите  могат  да се адаптират  предварително  към 
условията  на експеримента , но не и към изпитваното  
вещество . Предварителната  подготовка  се състои  от аериране  
на активната  утайка  в минерална  среда  или в оттока  в продъ­  
лжение  на 5—7 дни при температурата  на изпитването . 
Предварителната  подготовка  понякога  подобрява  точността  на 
методите  за изпитване  чрез намаляване  стойностите  на 
контролната  проба . Смята  се, че е излишно  посевките  за 
метода  на МITI да се подготвят  предварително . 
I.6.6.  Абиотични  контроли  
Когато  се налага , се прави  проверка  за възможно  абиотично  
разграждане  на изпитваното  вещество  чрез определяне  
изразходването  на DOC, потреблението  на кислород  или 
отделянето  на въглероден  диоксид  в стерилни  контроли , несъ­  
държащи  инокуланта . Пробата  се стерилизира  чрез филтруване  
през мембранен  филтър  (0,2—0,45 μm) или чрез добавяне  на 
подходящо  токсично  вещество  в съответна  концентрация . Ако 
се използва  мембранна  филтрация , пробите  се взимат  асептично , 
за да се поддържа  стерилността . Ако не е предварително  
определена  адсорбцията  на изпитваното  вещество , методите  за 
изпитване , които  измерват  биоразграждането  като изразходване  
на DOC, по-специално  при инокуланти  от активна  утайка , 
следва  да включват  и абиотична  контрола , която  е посята  с 
инокулант  и отровена . 
I.6.7.  Брой  на колбите  
Броят  на колбите  при един  типичен  опит  е описан  под 
заглавието  на всеки  от методите  за изпитване . 
Могат  да се използват  следните  видове  колби : 
— Суспензия  за изпитване : съдържа  изпитваното  вещество  и 
инокуланта . 
— Контролна  проба  за инокуланта : съдържа  само  инокулант . 
— Проба  за контрол  на процедурата : съдържа  сравнителното  
вещество  и инокуланта . 
— Проба  за абиотичен  стерилен  контрол : стерилна , съдържа  
изпитвано  вещество  (вж. I.6.6).  
— Проба  за контрол  на адсорбцията : съдържа  изпитвано  
вещество , инокулант  и стерилизиращ  агент . 
— Контрола  за токсичност : съдържа  изпитвано  вещество , 
сравнително  вещество  и инокулант . 
Задължително  е определянето  в изпитваната  суспензия  и в 
контролната  проба  за инокуланта  да се правят  успоредно . 
Препоръчително  е определянията  и в другите  колби  да се изпъ­  
лняват  също  така успоредно . 
Това  обаче  не винаги  е възможно . Трябва  да се осигури  вземане  
на достатъчно  проби  или отчитания , за да може  да се позволи  
оценяването  на процента  на разграждане  през 10-дневния  
период . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 986
 
I.7. ДАННИ  И ИЗЧИСЛЯВАНЕ  
При изчисляването  на процентното  разграждане  D t ce използват  
средните  стойности  от измерване  на две повторения  на 
параметъра  в съдовете  за изпитване  и в контролата  за инок­  
уланта . Формулите  са разяснени  по-долу  в разделите  за специф­  
ичните  методи  за изпитване . Ходът  на разграждането  се 
изрязява  графично , като се отбелязва  10-дневният  период . 
Изчислява  се и се нанася  в протокола  достигнатият  процент  на 
разграждане  в края  на 10-дневния  период  и стойността  при 
платото  или в края  на изпитването , което  от двете  е по- 
подходящо . 
При респирометрични  изпитвания  азот-съдържащи  съединения  
могат  да повлияват  потреблението  на кислород  поради  нитриф­  
икацията  (вж. приложения  II и V). 
I.7.1.  Разграждане , измервано  чрез  определяне  на разтворения  
органичен  въглерод  (DOC)  
Процентът  на разграждане  D t за всяко  време , в което  е взета  
една  проба , трябва  да се изчислява  поотделно  за колбите , 
съдържащи  изпитваното  вещество , като се използват  средните  
стойности  от две повторни  измервания  на DOC c оглед  да 
може  да се оцени  валидността  на изпитването  (вж. 1.5.2). За 
изчислението  се използва  следното  уравнение : 
D t ¼ 1 Ä C t Ä C bt 
C o Ä C b0 Í Î  
Ü 100  
където : 
D t = % разграждане  за време  I, 
С о = средна  начална  концентрация  на DОС в среда  с инок­  
улант , съдържаща  изпитваното  вещество  (mg DОС/l), 
С t = средна  концентрация  на DОС в среда  с инокулант , 
съдържаща  изпитваното  вещество  към времето  t (mg 
DОС/l), 
С bo = средна  начална  концентрация  на DОС в контролна  
проба  с инокулант  в минерална  среда  (mg DОС/1), 
С bt = средна  концентрация  на DОС в контролна  проба  с 
култура  в минерална  среда  към времето  t (mg D ОС/1). 
Всички  концентрации  се измерват  експериментално . 
I.7.2.  Разграждане , измервано  чрез  специфичен  анализ  
Когато  са достъпни  специфични  аналитични  данни , първонач­  
алното  биоразграждане  се изчислява  по формулата : 
D t ¼ S b Ä S a 
S b Ü 100  
където : 
D t = % на разграждане  за времето  I, нормално  28 дни, 
S а = остатъчно  количество  от изпитваното  вещество  в среда  с 
инокулант  към края  на изпитването  (mg),  
S b = остатъчно  количество  от изпитваното  вещество  в 
контролната  проба  с вода /среда , към която  е прибавено  
само  изпитваното  вещество  (mg).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 987
 
I.7.3.  Абиотично  разграждане  
Когато  се използва  стерилна  абиотична  контрола , за изчисляване  
на процента  на абиотичното  разграждане  се използва : 
% абиотично  разграждане ¼ C sðoÞ Ä C sðtÞ 
C sðoÞ Ü 100  
където  
C S(0) = концентрацията  на DOC в стерилната  контрола  към 
деня  0; 
C S(t) = концентрацията  на DOC в стерилната  контрола  към 
деня  t. 
I.8. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
По възможност  протоколът  от изпитването  трябва  да съдържа  
следното : 
— изпитвани  и сравнителни  химични  вещества  и тяхната  
чистота ; 
— условия  на изпитването ; 
— инокулант : естество  и място  на вземане  и всякакво  
предварително  третиране ; 
— съотношение  и естество  на индустриалните  отпадъци  в 
канализацията , ако са известни ; 
— продължителност  на изпитването  и температура ; 
— начин  на обработка  в случай  на трудно  разтворими  химични  
вещества ; 
— приложен  метод  за изпитване ; следва  да бъдат  представени  
научно  обосновани  причини  и обяснения  за всяка  промяна  в 
процедурата ; 
— таблица  с данни ; 
— всякакви  наблюдавани  явления  на инхибиране ; 
— всяко  наблюдавано  абиотично  разграждане ; 
— специфични  данни  от химичен  анализ , ако са достъпни ; 
— аналитични  данни  от междинните  продукти , ако са достъпни ; 
— следва  ясно  да са обозначени  кривата /диаграмата  на 
процента  на разграждане  във времето  за изпитваните  и за 
сравнителните  вещества ; латентната  фаза  (лаг-фазата ), 
фазата  на разграждане , 10-дневният  период  от време  и 
наклонът  (вж. приложение  I). Ако изпитването  се съгласува  
с критериите  за валидност , за графиката  може  да се използва  
средният  процент  на разграждане  в колбите , съдържащи  
изпитваното  вещество ; 
— процентът  на усвояване  след  10-дневен  период  и при платото  
или в края  на изпитването . 
ЧАСТ  II. ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА DOC ЧРЕЗ  СКОРОСТТА  НА 
ОТМИРАНЕ  (МЕТОД  В.4-А) 
II.1. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Един  измерен  обем  от бактериална  култура  в минерална  
среда , съдържаща  позната  концентрация  на изпитваното  
вещество  (10—40 mg DOC/l) като единствен  номинален  
източник  на органичен  въглерод , се аерира  на тъмно  или при 
дифузна  светлина  при 22 ± 2  o С. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 988
 
Разграждането  се следи  чрез анализ  на DOC на чести  интервали  
през един  28-дневен  период  от време . Степента  на 
биоразграждане  се изчислява  чрез изразяване  на концентрацията  
на изразходвания  DOC (коригирана  с тази на контролната  проба  
с инокулант  като процент  от първоначалната  концентрация . 
Степента  на първичното  биоразграждане  може  също  да се 
изчисли  от допълнителния  химичнен  анализ , направен  в 
началото  и в края  на инкубацията . 
II.2. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
II.2.1.  Апаратура  
а) Конични  колби , напр . от 250 ml до 2 l, в зависимост  от 
необходимия  обем  за анализ  на DOC.  
б) Клатачна  машина  за разполагане  на коничните  колби  или с 
автоматично  регулиране  на температурата , или използвана  в 
пространство  с постоянна  температура  и с достатъчна  
мощност , за да се поддържат  аеробни  условия  във всички  
колби . 
в) Апарат  за филтруване , с подходящи  мембрани . 
г) Анализатор  за DOC.  
д) Апарат  за определяне  на разтворен  кислород . 
е) Центрофуга . 
II.2.2.  Приготвяне  на минерална  среда  
За приготвянето  на изходните  разтвори  вж. I.6.2.  
Смесват  се 10 ml от разтвор  а) с 800 ml вода  за разреждане , 
добавят  се по 1 ml от разтвори  от б) до г) и се долива  до 1 l.  
II.2.3.  Предварителна  подготовка  и приготвяне  на инокуланта  
Инокулантът  може  да произхожда  от различни  източници : 
активна  утайка , отток  от канализация , повърхностни  води , 
почви  или смес  от всички  тях. 
Вижте  I.6.4., I.6.4.1., I.6.4.2. и I.6.5.  
II.2.4.  Подготовка  на колбите  
Като  пример : наливат  се порции  от по 800 ml минерална  среда  в 
конични  колби  от 2 1 и се добавят  достатъчни  обеми  от 
изходните  разтвори  на изпитваните  и сравнителните  вещества  
в отделни  колби  до достигане  на концентрация  на вещества  
еквивалентна  на 10—40 mg DOC/l. Проверяват  се стойностите  
на рН и се коригират , ако е необходимо , до 7,4. В колбите  се 
добавя  инокулантът  от активна  утайка  или друг  източник  (вж. 
I.6.4) до достигане  на крайна  концентрация  не по-голяма  от 
30 mg суспендирани  частици  на литър . Приготвят  се също  
така контролни  проби  с инокулант  в минерална  среда , но без 
изпитваното  или сравнителното  вещество . 
Ако е необходимо , използва  се един  съд, за да се провери  
възможният  ефект  на инхибиране  на изпитваното  вещество  
чрез посявка  на разтвор , съдържащ  в минерална  среда  
съпоставими  концентрации  от изпитваното  и сравнителното  
вещество . 
Също  така, ако се налага , се зарежда  допълнителна  стерилна  
колба , за да се провери  дали  изпитваното  вещество  се 
разгражда  абиотично , като се използва  разтвор  на веществото  
без инокулант  (вж. I.6.6).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 989
 
Допълнително , ако се подозира , че изпитваното  вещество  се 
адсорбира  значително  върху  стъклото , утайката  и т.н., се 
прави  предварителна  оценка  на степента  на адсорбция , а с 
това и на пригодността  на метода  за изпитване  на веществото  
(вж. таблица  1). Зарежда  се колба , съдържаща  изпитваното  
вещество , инокуланта  и стерилизиращ  агент . 
Във всички  колби  се долива  минерална  среда  до 1 l и след  
размесване  се взема  проба  от всяка  колба  за определяне  на 
началната  концентрация  на DOC ( вж. приложение  II.4). 
Отворите  на колбите  се покриват  например  с алуминиево  
фолио , така че да се позволи  свободен  обмен  на въздух  между  
колбата  и околната  атмосфера . След  това съдовете  се поставят  в 
клатачната  машина  за започване  на изпитването . 
II.2.5.  Брой  на колбите  при един  типичен  експеримент  
Колби  1 и 2: изпитвана  суспензия  
Колби  3 и 4: контролна  проба  с инокулант  
Колба  5: проба  за контрол  на процедурата  
За предпочитане , когато  е необходимо : 
Колба  6: абиотична  стерилна  контрола  
Колба  7: проба  за контрол  на адсорбцията  
Колба  8: контрола  за токсичност  
Вижте  също  I.6.7.  
II.2.6.  Изпълнение  на изпитването  
По време  на цялото  изпитване  се определя  концентрацията  на 
DOC двукратно  във всяка  колба  през известни  интервали  от 
време , достатъчно  често , за да може  да се определят  началото  
на 10-дневния  период  и процентът  на изразходване  в края  на 10- 
дневния  период . Взема  се само  минималният  обем  от 
изпитваната  суспензия , необходим  за всяко  определяне . 
Ако е необходимо , преди  вземането  на пробите  се възстановяват  
загубите  от изпарение  в колбите  чрез прибавяне  на достатъчно  
количество  вода  за разреждане  (I.6.1). При вземането  на проба  
средата  с инокуланта  се разклаща  добре  и се проверява  дали  
материалът , прилепнал  по стените  на съдовете , е разтворен  
или суспендиран , преди  да се вземе  пробата . Веднага  след  
вземането  пробата  се филтрира  през мембранен  филтър  или 
центрофугира  (приложение  II.4). В същия  ден се прави  анализ  
на филтрираните  или центрофугираните  проби , в противен  
случай  те се съхраняват  при 2—4  o С за максимум  48 часа или 
под –18  o С за по-дълги  периоди . 
II.3. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
II.3.1.  Обработка  на резултатите  
Пресмята  се процентът  на разграждане  за времето  t, както  е 
дадено  в I.7.1 (определяне  на DOC) или, по избор , в I.7.2 (спец­  
ифичен  анализ ). 
Всички  резултати  се записват  в предоставените  таблици  с данни  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 990
 
II.3.2.  Валидност  на резултатите  
Вж. I.5.2.  
II.3.3.  Протокол  от изпитването  
Вж. I.8.  
II.4. ПРОТОКОЛ  ЗА ДАННИ  
По-долу  е даден  примерен  протокол  за данни . 
ИЗПИТВАНЕ  ЗА ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА DOC ЧРЕЗ  СКОРОСТТТА  
НА ОТМИРАНЕ  
1. ЛАБОРАТОРИЯ  
2. ДАТА  НА ЗАПОЧВАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
3. ИЗПИТВАНО  ВЕЩЕСТВО  
Име: 
Концентрация  на изходния  разтвор : … mg/l като химично  
вещество  
Начална  концентрация  в средата : … mg/l като химично  
вещество  
4. ИНОКУЛАНТ  
Източник : 
Извършена  обработка : 
Предварителна  подготовка , ако има такова : 
Концентрация  на суспендирани  вещества  в реакционната  
смес : mg/1  
5. ОПРЕДЕЛЯНИЯ  НА ВЪГЛЕРОД  
Анализатор  на въглерод : 
Колба  номер  DOC след  n дни (mg/l) 
0 n  1 n 2 n 3 n x 
Изпитвано  
вещество  плюс  
инокулант  
1 a 1 
a 2 
а, средно  
C a(t) 
2 b 1 
b 2 
b, средно  
c b(t) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 991
 
Колба  номер  DOC след  n дни (mg/l) 
0 n  1 n 2 n 3 n x 
Контролна  проба  
с инокулант  без 
изпитваното  
вещество  3 c 1 
c 2 
c, средно  C c(t) 
4 d 1 
d 2 
d, средно  
C d(t) 
C blðtÞ ¼ C cðtÞ þ C dðtÞ 
2 
6. ОЦЕНЯВАНЕ  НА ПЪРВИЧНИ  ДАННИ  ОПРЕДЕЛЯНИЯ  
НА ВЪГЛЕРОД  
Колба  № % на разграждане  след  n дни 
0 n  1 n 2 n 3 n x 
1 D 1 ¼ Í 
1 Ä C aðtÞ Ä C blðtÞ 
C aðoÞ Ä C blðoÞ Î 
Ü 100 0 
2 D 2 ¼ Í 
1 Ä C bðtÞ Ä C blðtÞ 
C bðoÞ Ä C blðoÞ Î 
Ü 100 0 
Средно  (*) D ¼ D 1 Ä D 2 
2 0 
(*) D  1 и D 2 не следва  да се осредняват , ако има значителна  разлика  помежду  им. 
Забележка : подобни  протоколи  могат  да се използват  за 
сравнителното  вещество  и за контролата  за токсичност . 
7. АБИОТИЧНА  КОНТРОЛНА  ПРОБА  (по избор ) 
Време  (дни) 
0 t  
Концентрация  на DOC (mg/l) в стерилната  
контрола  C s(o) C s(t) 
% абиотично  разграждане ¼ C sðoÞ Ä C sðtÞ 
C sðoÞ Ü 100  
8. СПЕЦИФИЧЕН  ХИМИЧЕН  АНАЛИЗ  
Остатъчно  количество  от 
изпитваното  вещество  в края  
на изпитването  (mg/l) % на първично  разграждане  
Стерилна  контрола  S  b ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 992
 
Остатъчно  количество  от 
изпитваното  вещество  в края  
на изпитването  (mg/l) % на първично  разграждане  
Среда  за изпитване  с инокулант  Sa  S b Ä S a 
S b Ü 100  
ЧАСТ  III. МОДИФИЦИРАН  СКРИНИНГ  НА ОИСР  (метод  
В.4-Б) 
III. I. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
В едно  измерено  количество  минерална  среда , съдържаща  
позната  концентрация  на изпитваното  вещество  (10—40 mg 
DOC на литър ) като единствен  номинален  източник  на 
органичен  въглерод , се инокулират  с 0,5 ml отток  на литър  
среда . Сместа  се аерира  на тъмно  или на дифузна  светлина  
при 22 ± 2  o С. 
Разграждането  се следи  чрез анализ  на DOC на чести  интервали  
за 28-дневен  период . Степента  на биоразграждане  се изчислява  
чрез изразяване  на концентрацията  на изразходвания  DOC 
(коригирана  с тази на контролата  с инокуланта ) като процент  
от първоначалната  концентрация . Степента  на първичното  
биоразграждане  може  също  да се изчисли  от допълнителен  
химичен  анализ , направен  в началото  и в края  на инкубацията . 
III.2. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
III.2.1. Апаратура  
а) Конични  колби , от 250 ml до 2 l, в зависимост  от необ­  
ходимия  обем  за анализ  на DOC.  
б) Клатачна  машина  за разполагане  на коничните  колби  или с 
автоматично  регулиране  на температурата  или използвана  в 
пространство  с постоянна  температура  и с достатъчна  
мощност , за да се поддържат  аеробни  условия  във всички  
колби . 
в) Апарат  за филтруване  с подходящи  мембрани . 
г) Анализатор  за DOC.  
д) Апарат  за определяне  на разтворен  кислород . 
е) Центрофуга . 
Ш.2.2. Приготвяне  на минерална  среда  
За приготвянето  на изходните  разтвори  вижте  1.6.2.  
Смесват  се 10 ml от разтвор  а) с 80 ml вода , прибавят  се по 1 ml 
от разтвори  от б) до г) и се долива  до 1 l. 
Този  метод  използва  само  0,5 ml отток  на литър  като инокулант  
и поради  това средата  трябва  да се подсили  с микроелементи  и 
растежни  фактори . Това  се прави  чрез добавяне  на 1 ml от всеки  
от следните  разтвори  на литър  от крайната  среда : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 993
 
Разтвор  на микроелементи : 
Манганов  сулфат  тетрахидрат , MnSO  4 .4H  2 O 39,9 mg 
Борна  киселина , Н 3 ВО 3 57,2 mg 
Цинков  сулфат  хептахидрат , ZnSO  4 .7H  2 O 42,8 mg 
Амониев  хептамолибдат , (NH  4 ) 6 MO  7 O 24 34,7 mg 
Fe-хелат  (FeCl  3 етилендиаминтетраоцетна  
киселина ) 100 mg 
Разтварят  се във вода  и се доливат  с разреждаща  
вода  до 1 литър . 
Разтвор  на витамини : 
Екстракт  от дрожди  15,0 mg  
Разтваря  се екстракт  от дрожди  в 100 ml вода . Стерилизира  се 
чрез филтруване  през мембранен  филтър  0,2 μm или се приготвя  
пресен . 
III.2.3.  Приготвяне  и предварителна  подготовка  на инокулант  
Инокулантът  се взема  от оттока  на ГСПОВ  или лабораторно  
звено , приемащо  предимно  битови  отпадъчни  води . Вж. I.6.4.2 
и I.6.5.  
Използва  се 0,5 ml на литър  минерална  среда . 
III.2.4.  Подготовка  на колбите  
Като  пример : наливат  се порции  от по 800 ml минерална  среда  в 
конични  колби  от 2 1 и се добавят  достатъчни  обеми  от 
изходните  разтвори  на изпитваните  и сравнителните  вещества  
в отделни  колби  до достигане  на концентрация  на химичното  
вещество , еквивалентна  на 10 — 40 mg DOC/l. Проверяват  се 
стойностите  на рН и се коригират , ако е необходимо  до 7,4. В 
колбите  се добавя  инокулант  от оттока  на ГСПОВ  в количество  
0,5 ml/l ( вж. I.6.4.2). Приготвят  се също  така контролни  проби  с 
инокулант  в минерална  среда , но без изпитваното  или сравнит­  
елното  вещество . 
Ако е необходимо , използва  се един  съд, за да се провери  
възможният  ефект  на инхибиране  на изпитваното  вещество  
чрез посявка  на разтвор , съдържащ  в минерална  среда  
съпоставими  концентрации  от изпитваното  и сравнителното  
вещество . 
Също  така, ако се налага , се зарежда  допълнителна  стерилна  
колба , за да се провери  дали  изпитваното  вещество  се 
разгражда  абиотично , като се използва  разтвор  на веществото  
без инокулант  (вж. I.6.6).  
Допълнително , ако се подозира , че изпитваното  вещество  се 
адсорбира  значително  върху  стъкло , утайка  и т.н., се прави  
предварителна  оценка  на степента  на адсорбция , а с това и на 
пригодността  на метода  за изпитване  на химичното  вещество  
(вж. таблица  1). Зарежда  се колба , съдържаща  изпитваното  
вещество , инокуланта  и стерилизиращ  агент . 
Във всички  колби  се долива  минерална  среда  до 1 l и след  
размесване  се взема  проба  от всяка  колба  за определяне  на 
началната  концентрация  на DOC ( вж. приложение  II.4). 
Отворите  на колбите  се покриват  например  с алуминиево  
фолио , така че да се позволи  свободен  обмен  на въздух  между  
колбата  и околната  атмосфера . След  това съдовете  се поставят  в 
клатачната  машина  за започване  на изпитването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 994
 
III.2.5.  Брой  на колбите  при типичен  експеримент  
Колби  1 и 2: изпитвана  суспензия  
Колби  3 и 4: контролна  проба  с инокулант  
Колба  5: проба  за контрол  на процедурата  
За предпочитане , когато  е необходимо : 
Колба  6: абиотична  стерилна  контрола  
Колба  7: проба  за контрол  на адсорбцията  
Колба  8: контрола  за токсичност  
Вж. също  I.6.7.  
III.2.6.  Изпълнение  на изпитването  
По време  на цялото  изпитване  се определя  концентрацията  на 
DOC двукратно  във всяка  колба  през известни  интервали  
от време , достатъчно  често , за да може  да се определи  
началото  на 10-дневния  период  и процента  на изразходване  в 
края  на 10-дневния  период . Взема  се само  минималният  обем  от 
изпитваната  суспензия , необходим  за всяко  определяне . 
Ако е необходимо , преди  вземането  на пробите  се възстановяват  
загубите  от изпарение  в колбите  чрез прибавяне  на достатъчно  
количество  вода  за разреждане  (I.6.1). При вземането  на проба  
средата  с инокуланта  се разклаща  добре  и се проверява  дали  
материалът , полепнал  по стените  на съдовете , е разтворен  или 
суспендиран , преди  да се вземе  пробата . Веднага  след  вземането  
пробата  се филтрира  през мембранен  филтър  или центрофугира  
(приложение  II.4). В същия  ден се прави  анализ  на 
филтрираните  или центрофугираните  проби , в противен  случай  
те се съхраняват  при 2—4  o С за максимум  48 часа или под 
–18  o С за по-дълги  периоди . 
III.3. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
III.3.1.  Обработка  на резултатите  
Пресмята  се процентът  на разграждане  за времето  t, както  е 
дадено  в I.7.1 (определяне  на DOC) или, по избор , в I.7.2 (спец­  
ифичен  анализ ). 
Всички  резултати  се записват  в предоставените  таблици  с данни  
III.3.2. Валидност  на резултатите  
Вж. I.5.2.  
Ш.3.3. Протокол  от изпитването  
Вж. I.8.  
III.4. ПРОТОКОЛ  ЗА ДАННИ  
По-долу  е даден  примерен  протокол  за данни . 
МОДИФИЦИРАНО  ИЗПИТВАНЕ  НА ОИСР  
1. ЛАБОРАТОРИЯ  
2. ДАТА  НА ЗАПОЧВАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 995
 
3. ИЗПИТВАНО  ВЕЩЕСТВО  
Име: 
Концентрация  на изходния  разтвор : … mg/l като химично  
вещество  
Начална  концентрация  на средата : … mg/l като химично  
вещество  
4. ИНОКУЛАНТ  
Източник : 
Извършена  обработка : 
Предварителна  подготовка , ако има такова : 
Концентрация  на суспендирани  частици  в реакционната  
смес : mg/l  
5. ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ВЪГЛЕРОДА  
Анализатор  на въглерод  
Колба  № DOC след  n дни (mg/l) 
0 n  1 n 2 n 3 n х 
Изпитвано  
вещество  плюс  
инокулант  
1 a 1 
a 2 
а, средно  
C a(t) 
2 b 1 
b 2 
В, средно  
C b(t) 
Контролен  
инокулант  без 
изпитваното  
вещество  3 c 1 
c 2 
С, средно  C c(t) 
4 d 1 
d 2 
d, средно  
C d(t) 
C blðtÞ ¼ C cðtÞ þ C dðtÞ 
2 
6. ОЦЕНЯВАНЕ  НА ПЪРВИЧНИТЕ  ДАННИ  
Колба  № % на разграждане  след  n дни 
0 n  1 n 2 n 3 n х 
1 D 1 ¼ Í 
1 Ä C aðtÞ Ä C blðtÞ 
C aðoÞ Ä C blðoÞ Î 
Ü 100 0 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 996
 
Колба  № % на разграждане  след  n дни 
0 n  1 n 2 n 3 n х 
2 D 2 ¼ Í 
1 Ä C bðtÞ Ä C blðtÞ 
C bðoÞ Ä C blðoÞ Î 
Ü 100 0 
Средна  
стойност  (*) D ¼ D 1 Ä D 2 
2 0 
(*) D  1 и D 2 не трябва  да се осредняват , ако имат  значителна  разлика . 
Забележка : подобни  протоколи  могат  да се използват  за 
сравнителното  химично  вещество  и за контролата  за токсичност . 
7. АБИОТИЧНА  КОНТРОЛА  (по избор ) 
Време  (дни) 
0 t  
Концентрация  на DOC (mg/l) в стерилната  
контрола  C s(o) C s(t) 
% абиотично  разграждане ¼ C sðoÞ Ä C sðtÞ 
C sðoÞ Ü 100  
8. СПЕЦИФИЧЕН  ХИМИЧЕН  АНАЛИЗ  (по избор ) 
Остатъчно  количество  от 
изпитваното  вещество  в края  
на изпитването  (mg/l) % на първично  разграждане  
Стерилна  контрола  S  b 
Среда  за изпитване  с инокуланта  Sa  S b Ä S a 
S b Ü 100 
ЧАСТ  IV. МЕТОД  ЗА ОТДЕЛЯНЕ  НА СО  2 (МЕТОД  В.4-В) 
IV.1. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Един  измерен  обем  на инокулант  в минерална  среда , съдържаща  
позната  концентрация  от изпитваното  химично  вещество  
(10—20 mg DOC или ТОС /l) като единствен  номинален  
източник  на органичен  въглерод , се аерира  чрез преминаване  
на контролиран  дебит  на чист  от въглероден  диоксид  въздух  
на тъмно  или при дифузна  светлина . Разграждането  се 
проследява  повече  от 28 дни чрез определяне  на произведения  
въглероден  диоксид , който  се улавя  в бариев  или натриев  
хидроксид  и се измерва  чрез титруване  на остатъчния  
хидроксид  или като неорганичен  въглерод . Количеството  
въглероден  диоксид , произведено  от изпитваното  вещество  
(коригирано  с това, което  произхожда  от контролния  инокулант ) 
се изразява  като процент  от ТhСО 2 . Степента  на биоразграждане  
може  също  да бъде  изчислена  чрез допълнителен  анализ  на 
DOC, който  се прави  в началото  и в края  на инкубацията . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 997
 
IV.2. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
IV.2.1.  Апаратура  
а) Колби , 2—5 l, всяка  снабдена  с тръба  за аериране , достигаща  
почти  до дъното  на съда , и отдушник . 
б) Магнитни  бъркалки , при оценяване  на трудноразтворими  
химични  вещества . 
в) Колби  за абсорбция  на газа. 
г) Уред  за контролиране  и измерване  на въздушния  поток . 
д) Апарат  за поглъщане  на въглероден  диоксид , за подготовка  
на въздух , несъдържащ  въглероден  диоксид ; съответно  може  
да се използва  смес  от несъдържащ  СО 2 кислород  и несъ­  
държащ  СО 2 азот от газови  колби  в правилно  съотношение  
(20 % О 2 : 80 % N  2 ). 
е) Уред  за определяне  на въглероден  диоксид  или чрез 
титруване , или чрез някаква  друга  форма  на анализатор  на 
неорганичен  въглерод . 
ж) Уред  за мембранно  филтруване  (по избор ). 
з) Анализатор  на DOC (по избор ) 
IV.2.2.  Приготвяне  на минерална  среда  
За приготвянето  на изходните  разтвори  вж. I.6.2.  
Смесват  ce 10 ml от разтвор  а) с 800 ml разреждаща  
вода , прибавят  се по 1 ml от разтворите  от б) до г) и се 
долива  до 1 l. 
IV.2.3.  Приготвяне  и предварителна  подготовка  на инокуланта  
Инокулантът  може  да произлиза  от различни  източници : активна  
утайка , отточни  канални  води , повърхностни  води , почви  или 
смес  от всички  тях. 
Вж. I.6.4, I.6.4.1, I.6.4.2 и I.6.5.  
IV.2.4.  Приготвяне  на колбите  
Като  пример  са дадени  обемите  и теглата , необходими  за 
5-литрови  колби , съдържащи  3 1 от суспензията . Ако се 
използват  по-малки  обеми , стойностите  се променят  съответно , 
но трябва  да се осигури  точно  измерване  на образувания  
въглероден  диоксид . 
Във всяка  5-литрова  колба  се прибавят  2 400 ml минерална  
среда . Прибавя  се подходящ  обем  от приготвената  активна  
утайка  (вж. I.6.4.1 и I.6.5), за да се получи  концентрация  на 
суспендираните  частици  не по-висока  от 30 mg/l в крайните  3 
1 смес  на инокуланта . Друга  възможност  е първо  да се разреди  
приготвената  утайка  до суспензия  от 500—1 000 mg/l в 
минералната  среда , преди  аликвотна  част от нея да се прибави  
към съдържанието  на колба  от 5 1 с оглед  да се получи  конце­  
нтрация  от 30 mg/l. Това  осигурява  по-голяма  точност . Могат  да 
се използват  и други  източници  на инокулант  (вж. I.6.4.2.).  
Тези  смеси  с инокулант  се аерират  с несъдържащ  СО 2 въздух  в 
продължение  на 12 часа, за да се изчисти  системата  от 
въглероден  диоксид . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 998
 
Прибавят  се поотделно  известни  обеми  от изходните  разтвори  
на изпитваното  и сравнителното  вещество  към две колби  до 
получаване  на концентрации  на дадените  химични  вещества  от 
10 до 20 mg DOC или ТОС /l. Оставят  се няколко  колби  без 
добавка  на вещества  като контролен  инокулант . Трудноразт­  
воримите  вещества  за изпитване  се прибавят  директно  в 
колбите  на базата  на обем  или на тегло  и с тях се процедира , 
както  е описано  в приложение  III. 
Ако се изисква , една  колба  се използва  за проверка  на възможен  
инхибиторен  ефект  на изпитваното  химично  вещество  чрез 
прибавяне  на изпитваното  и сравнителното  вещества  при 
същата  концентрация  както  в другите  колби . 
Също  така, ако се изисква , една  стерилна  колба  се използва  за 
проверка  дали  изпитваното  вещество  се разгражда  абиотично , 
използвайки  разтвор  на веществото  без инокулант  (вж. I.6.6). 
Стерилизира  се чрез прибавяне  на токсично  вещество  с 
подходяща  концентрация . 
Обемите  на суспензиите  във всички  колби  се доливат  до 3 1 
чрез прибавяне  на минерална  среда , предварително  аерирана  с 
въздух , свободен  от СО 2 . По избор  могат  да се отделят  проби  за 
анализ  на DOC (вж. приложение  II.4) и/или за друг  специфичен  
анализ . Абсорбционните  колби  се свързват  с отдушниците  на 
колбите . 
Ако се използва  бариев  хидроксид , се присъединяват  три 
абсорбционни  колби , като всяка  съдържа  по 100 ml от 0,0125 
M [mol/l] разтвор  на бариев  хидроксид , последователно  към 
всяка  5-литрова  колба . Разтворът  не трябва  да съдържа  утаен  
сулфат  и карбонат  и неговата  концентрация  трябва  да се 
определя  непосредствено  преди  употреба . Ако се използва  
натриев  хидроксид , се присъединяват  два абсорбционни  съда , 
като вторият  действа  като контрола  на първия , за да се 
покаже , че цялото  количество  въглероден  диоксид  е 
абсорбирано  в първия  съд. За абсорбция  са подходящи  колби , 
които  се затварят  с капачки  от серумни  колби . Прибавят  се 
200 ml 0,05 M [mol/l] натриев  хидроксид  към всяка  колба , 
което  е достатъчно  да абсорбира  цялото  количество  въглероден  
диоксид , отделен , когато  изпитваното  вещество  се разгради  
напълно . Натриевият  хидроксид , даже  прясно  приготвен , 
съдържа  следи  от карбонати . Това  се коригира  чрез намаляване  
със стойността  на карбоната , съдържащ  се в контролната  проба . 
IV.2.5.  Брой  на колбите  при типичен  експеримент  
Колби  1 и 2: изпитвана  суспензия  
Колби  3 и 4: контролна  проба  с инокуланта  
Колба  5: проба  за контрол  на процедурата  
и за предпочитане , когато  е необходимо : 
Колба  6: абиотична  стерилна  контрола  
Колба  7: контрола  за токсичност  
Вж. също  I.6.7.  
IV.2.6.  Изпълнение  на изпитването  
Изпитването  се започва  с барботиране  на суспензиите  с въздух  
без СО 2 при дебит  30—100 ml/min. Периодично  се вземат  проби  
от абсорбента  на въглероден  диоксид  за анализ  на съдържанието  
на СО 2 . По време  на първите  десет  дни се препоръчва  анализът  
да се прави  всеки  втори  или трети  ден и след  това всеки  пети  
ден до 28-ия ден, така че да бъде  определен  10-дневният  период . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 999
 
На 28-ия ден се вземат  проби  (по избор ) за DOC и/или спец­  
ифичен  анализ , измерва  се рН на суспензиите  и се добавя  1 ml 
концентрирана  солна  киселина  към всяка  колба . Колбите  се 
аерират  12 часа, за да се изчисти  въглеродният  диоксид  от 
изпитваните  суспензии . На 29-ия ден се прави  последен  анализ  
за отделения  въглероден  диоксид . 
В дните  на измерване  на СО 2 се откача  абсорберът  с бариев  
хидроксид , който  е най-близо  до колбата , и разтворът  на 
хидроксид  се титрува  с 0,05 M [mol/l] HCl, като ce използва  
фенолфталеин  като индикатор . Преместват  се останалите  
абсорбери  с едно  място  по-близо  до колбата  и се поставя  нов 
абсорбер , съдържащ  100 ml пресен  0,0125 M [mol/l] бариев  
хидроксид  най-накрая  на редицата . Необходимото  титруване  се 
прави , например , когато  се вижда  значителна  утайка  в първия  
абсорбер  и преди  да има видима  във втория , или най-малко  
веднъж  на седмица . При избран  абсорбент  NaOH ce взема  
малка  проба  със спринцовка  (в зависимост  от характеристиките  
на използвания  апарат  за анализ  на въглерод ) от разтвора  на 
натриевия  хидроксид  от абсорбера  най-близо  до колбата . 
Пробата  се инжектира  в частта  за неорганичен  въглерод  на 
анализатора  на въглерод  за директен  анализ  на отделения  
въглероден  диоксид . 
Съдържанието  на втория  абсорбер  се анализира  едва в края  на 
изпитването , за да се коригира  за някакъв  евентуален  пренос  на 
въглероден  диоксид . 
IV.3. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
IV.3.1.  Обработка  на резултатите  
Количеството  уловен  в абсорбера  СО 2 след  титруване  се дава 
като: 
mg CO2 = (100 × CB – 0,5 × V × C  A ) × 44  
където : 
V = обема  M [mol/l] на НСl, използван  за титруване  на 
100 ml от абсорбера  (ml),  
С B = концентрация  на разтвора  на бариевия  хидроксид  
(mol/l),  
С A = концентрация  на разтвора  на солна  киселина  (mol/l).  
Ако С B е 0,0125 mol/l и С A е 0,05 mol/l, титрирането  за 100 ml 
бариев  хидроксид  е 50 ml и теглото  на СО 2 ce дава от: 
0; 05 
2 Ü 44 Ü ml HCI тцтрувани ¼ 1; 1 Ü ml HCI  
Така  в този случай  факторът  за изчисляване  на отделеното  
количество  mg СО 2 по обема  на НСl, изразходвана  за титруване , 
е 1,1.  
Изчисляват  се поотделно  теглата  на отделения  СО 2 , произведен  
само  от инокуланта  и от инокуланта  плюс  изпитваното  
вещество , като се използват  съответните  стойности  от 
титруването ; а разликата  е теглото  на СО 2 , отделен  само  от 
разграждането  на изпитваното  вещество . 
Например , ако само  при инокуланта  е титрувано  с 48 ml, a при 
инокуланта  плюс  изпитваното  вещество  — с 45 ml, тогава  
СО 2 от инокуланта  = 1,1 × (50 - 48) = 2,2 mg  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1000
 
СО 2 от инокуланта  плюс  изпитваното  вещество  = 1,1 × (50 - 45) 
= 5,5 mg  
и така теглото  на произведения  СО 2 от изпитваното  вещество  е 
3,3 mg.  
Процентът  на биоразграждане  се изчислява  от: 
% разграждане ¼ ðте произведен  CO  2 Ü 100Þ 
ðThCO  2 Ü mg прибавено  изпитвано  вещсствоÞ 
или 
% разграждане ¼ ðmg произведен  CO  2 Ü 100Þ 
ðmg TO добавено  при изпитване  то Ü 3; 67Þ 
където  3,67 е фактор  на преобразуване  (44/12) на въглерода  във 
въглероден  диоксид . 
Процентът  разграждане  се получава  след  всеки  интервал  от 
време  чрез прибавяне  на процентните  стойности  за ТhСО 2 
изчислени  за всеки  от дните  до времето , до което  е измервано . 
При абсорберите  с натриев  хидроксид  количеството  произведен  
въглероден  диоксид  се изчислява , изразено  като неорганичен  
въглерод  (IC) (mg), чрез умножаване  на концентрацията  на IC 
в абсорбента  по обема  на абсорбента . 
Процентът  на разграждане  се изчислява  от: 
% ThCO  2 ¼ ðmg IС встъкленицата Ä mg IC в контролатаÞ 
ðmg TOC прибавен  като  вещсство  за изпитванеÞ Ü 100 
Изчислява  се намалението  на DOC (по избор ), както  е описано  в 
I.7. Тези  и всички  останали  резултати  се записват  във формуляра  
за данни . 
IV.3.2.  Валидност  на резултатите  
Съдържанието  на неорганичен  въглерод  (IC) в суспензията  с 
изпитваното  вещество  в минерална  среда  в началото  на 
изпитването  следва  да бъде  по-малко  от 5 % от общия  
въглерод  (ТС) и общото  отделяне  на СО 2 от контролния  
инокулант  в края  на изпитването  нормално  не следва  да 
надвишава  40 mg/l средно . Ако получените  стойности  са по- 
високи  от 70 mg СО 2 /литър , резултатите  и експерименталната  
техника  следва  критично  да се проверят . 
Вж. също  I.5.2.  
IV.3.3.  Протокол  от изпитването  
Вж. I.8.  
IV. 4. ПРОТОКОЛ  ЗА ДАННИ  
Тук е даден  примерен  протокол  за данни . 
ИЗПИТВАНЕ  ЗА ОТДЕЛЯНЕ  НА ВЪГЛЕРОДЕН  ДИОКСИД  
1. ЛАБОРАТОРИЯ  
2. ДАТА  НА ЗАПОЧВАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
3. ИЗПИТВАНО  ВЕЩЕСТВО  
Име: 
Концентрация  на изходния  разтвор : … mg/l като химично  
вещество  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1001
 
Начална  концентрация  в средата : … mg/l като химично  
вещество  
Общ  въглерод , добавен  към колбата : … mg C  
ThCO  2 : mg CO  2 
4. ИНОКУЛАНТ  
Източник : 
Извършена  обработка : 
Предварителна  подготовка , ако има такава : 
Концентрация  на суспендирани  вещества  в реакционната  
смес : mg/l  
5. ОТДЕЛЯНЕ  НА ВЪГЛЕРОДЕН  ДИОКСИД  И РАЗГ­  
РАЖДАНЕ  
Метод : Ba(OH)  2 NaOH или друг  
Време  
(ден) Образуван  СО 2 
от изпитването  (mg) Образуван  СО 2 
от контролната  проба  
(mg) Кумулиран  СО 2 (mg) 
(изпитв . минус  
средна  от 
контролата ) ThCO  2 
Кумулиран  CO  2 
ThCO  2 Ü 100  
1 
2 средно  3 
4 средно  1 2 1 2 средно  
0 
n 1 
n 2 
n 3 
28 
Забележка : подобни  форми  могат  да се използват  за сравнит­  
елното  вещество  и за контролата  за токсичност . 
6. АНАЛИЗ  НА ВЪГЛЕРОД  (не е задължителен ) 
Анализатор  на въглерод : 
Време (ден) Контрола  mg/l Изпитвано  вещество  mg/l  
0 C  b(o) C o 
28 (*) C  b(t) C t 
(*) Или в края  на инкубацията . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1002
 
% изразходван  DOC ¼ Í 
1 Ä C t Ä C bðtÞ 
1 Ä C t Ä C bðoÞ Î 
Ü 100  
7. АБИОТИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ  (по избор ) 
% абиотично  разграждане ¼ образуван  CO  2 в стерилна  стъкленица  след 28 дни ðmgÞ 
ThCO  2 ðmgÞ Ü 100 
ЧАСТ  V. ИЗПИТВАНЕ  ЧРЕЗ  МАНОМЕТРИЧНА  РЕСП­  
ИРОМЕТРИЯ  (МЕТОД  В.4-Г) 
V.1. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Измерено  количество  от инокуланта  в минерална  среда , 
съдържаща  известна  концентрация  от изпитваното  вещество  
(100 mg/l от изпитваното  вещество , така че да даде  50 — 
100 mg ThOD/ литър ) като единствен  номинален  източник  на 
органичен  въглерод , се разбърква  в затворена  колба  при 
постоянна  температура  (± 1  o С или още по-точно ) за 28 дни. 
Консумацията  на кислород  се определя  или чрез измерване  на 
количеството  кислород  (проведен  електролитно ), необходим  да 
поддържа  постоянен  газов  обем  в респирометричната  колба , или 
от изменението  на обема  или налягането  (или комбинация  от 
двете ) в апаратурата . Отделеният  въглероден  диоксид  се 
абсорбира  от разтвор  на калиев  хидроксид  или друг  подходящ  
абсорбент . Количеството  кислород , погълнат  от изпитваното  
вещество  (коригирано  с това на контролния  инокулант , 
изпитван  успоредно ), се изразява  като процент  от ThOD или 
ХПК  (COD). По избор  първичното  биоразграждане  може  да се 
изчислява  чрез допълнителен  специфичен  анализ , изпълнен  в 
началото  и в края  на инкубацията , а пълното  биоразграждане  
– чрез анализ  на DOC.  
V.2. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
V.2.1.  Апаратура  
а) подходящ  респирометър ; 
б) устройство  за регулиране  на температурата , поддържащо  
± 1  o С, или по-добро ; 
в) уред  за мембранно  филтруване  (по избор ); 
г) уред  за анализ  на въглерод  (по избор ). 
V.2.2.  Приготвяне  на минерална  среда  
За приготвянето  на изходните  разтвори  вж. I.6.2.  
Смесват  се 10 ml от разтвор  а) с 800 ml вода  за разреждане , 
прибавя  се по 1 ml от разтвори  от б) до г) и се долива  до 1 l. 
V.2.3.  Приготвяне  и предварителна  подготовка  на инокуланта  
Инокулантът  може  да произхожда  от различни  източници : 
активна  утайка , отток  на канални  води , повърхностни  води , 
почви  или смес  от всички . 
Вж. I.6.4, I.6.4.1, I.6.4.2 и I.6.5.  
V.2.4.  Приготвяне  на колбите  
Приготвят  се разтвори  от изпитваното  и сравнителното  
вещество , на отделни  партиди , еквивалентни  на минерална  
среда  с концентрация  обикновено  100 mg вещество /литър  
(даваща  най-малко  50—100 mg ThOD/l), като се използват  
изходните  разтвори . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1003
 
Изчислява  се ThOD на базата  на образуване  на амониеви  
соли , освен  ако не се очаква  нитрификация , когато  изчис­  
ляването  следва  да се базира  върху  образуването  на нитрат  
(вж. приложение  II.2)  
Определят  се стойностите  на рН и ако е необходимо , се 
коригират  до 7,4 ± 0,2.  
Трудноразтворими  вещества  се прибавят  на по-късни  етапи  
(вж. по-долу ). 
Ако следва  да се определя  токсичността  на изпитваното  
вещество , се приготвя  допълнително  разтвор  в минерална  
среда , съдържащ  изпитваното  и сравнителното  вещество  в 
същите  концентрации  както  в индивидуалните  разтвори . 
Ако се изисква  измерване  на физикохимичното  усвояване  на 
кислорода , се приготвя  разтвор  на изпитваното  вещество , обик­  
новено  100 mg ThOD/l, който  се стерилизира  чрез прибавяне  на 
подходящо  токсично  вещество  (вж. I.6.6).  
Необходимите  обеми  от разтворите  на изпитваното  и сравнит­  
елното  вещество  се дублират  най-малко  в по две колби . Към 
други  колби  се налива  само  минерална  среда  (за контролния  
инокулант ) и, ако се изисква , смесен  разтвор  от изпитваното  и 
сравнителното  вещества  и стерилен  разтвор . 
Ако изпитваното  вещество  е трудно  разтворимо , се прибавя  
директно  на този етап, на базата  на обем  или на тегло , или се 
процедира , както  е описано  в приложение  III. Прибавя  се калиев  
хидроксид , гранули  натриева  вар (смес  от натриев  хидроксид  
и калциев  оксид ) или друг  абсорбент  в клетките  за абсорбция  
на СО 2 . 
V.2.5.  Брой  на колбите  при типичен  експеримент  
Колби  1 и 2: изпитвана  суспензия  
Колби  3 и 4: контролна  проба  с инокулант  
Колба  5: проба  за контрол  на процедурата  
За предпочитане , когато  е необходимо : 
Колба  6: стерилна  контрола  
Колба  7: контрола  за токсичност  
Вж. също  I.6.7.  
V.2.6.  Изпълнение  на изпитването  
Съдовете  се оставят  да достигнат  желаната  температура  и 
подходящите  съдове  се посяват  с приготвена  активна  утайка  
или друг  източник  на инокулант , така че да се получи  конце­  
нтрация  на суспендирани  частици  не по-висока  от 30 mg/l. 
Апаратурата  се сглобява , включва  се разбъркването , проверява  
се за херметичност  по отношение  на въздуха  и започва  
измерването  на поемането  на кислород . Обикновено  не са необ­  
ходими  повече  грижи  освен  отчитането  на необходимите  данни  
и ежедневни  проверки  дали  се поддържат  точната  температура  и 
съответното  разбъркване . 
Усвояването  на кислород  се изчислява  по редовно  правени  
отчитания , на чести  интервали , като се използват  методите , 
дадени  от производителя  на апаратурата . В края  на инкубацията , 
нормално  28 дни, се измерва  рН на съдържанието  на колбите , 
по-специално  ако поемането  на кислород  е ниско  или по-високо  
от ThOD  NH4 (за азот-съдържащи  съединения ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1004
 
Ако е необходимо , в началото  и в края  се вземат  проби  от 
респирометричните  колби  за анализ  на DOC или на друго  спец­  
ифично  вещество  (вж. приложение  II.4). При първото  вземане  на 
проба  следва  да е сигурно , че е известен  обемът  на оставащата  в 
колбата  суспензия . Когато  кислородът  се консумира  от N- 
съдържащо  съединение , се определя  увеличението  на конце­  
нтрацията  на нитрит  и нитрат  за 28 дни и се изчислява  
корекцията  за кислорода , консумиран  чрез нитрификацията  
(приложение  V). 
V.3. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
V.3.1.  Обработка  на резултатите  
Усвоеното  количество  кислород  (mg) от изпитваното  вещество  
след  дадено  време  (коригирано  с това на контролния  инокулант  
за същото  време ) се разделя  на теглото  на използваното  за 
изпитването  вещество . Това  дава биохимичната  потребност  от 
кислород  (BOD), изразена  като mg кислород /mg изпитвано  
вещество , което  е 
BOD ¼ ðте O 2 усвоено  от изпитваното  вещество Ä mg O  2 усвоен  от контгюлната  ттообаÞ 
ðmg изпивано  вещество  в колбатаÞ 
= mg O  2 за mg изпитвано  вещество  
Определя  се процентът  на биологичното  разграждане  или като: 
% на биоразграждане ¼ % ThOD ¼ BODðmg O  2=mg химично  веществоÞ 
ThODðmg O  2 на веществоÞ Ü 100 
или като 
% COD ¼ BODðmg O  2=mg химично  веществоÞ 
CODðmg O  2 на химично  веществоÞ Ü 100 
Следва  да се отбележи , че тези два метода  не дават  непременно  
същата  стойност ; препоръчително  е да се използва  последният  
метод . 
За изпитвани  вещества , съдържащи  азот, се използва  подходяща  
ThOD (NH  4 или NO  3 ) според  това, което  се знае или се очаква  
да стане  при наличие  на нитрификация  (приложение  II.2). 
Ако има нитрификация , но тя още не е завършила , корекцията  
за консумиран  кислород  чрез нитрификацията  се изчислява  
от промените  в концентрацията  на нитрита  и нитрата  
(приложение  V). 
Когато  по избор  се правят  определяния  на органичен  въглерод  
и/или на специфично  вещество , процентът  на разграждане  се 
изчислява , както  е описано  в I.7. 
Всички  резултати  се записват  в приложения  протокол  за данни . 
V.3.2.  Валидност  на резултатите  
Кислородът , усвоен  от контролния  инокулант , е нормално  
20—30 mg О 2 /литър  и не следва  да е по-висок  от 60 mg/l за 
28 дни. Стойности , по-високи  от 60 mg/l, изискват  критична  
проверка  на данните  и експерименталните  техники . Ако стой­  
ностите  на рН са извън  областта  6—8,5 и кислородната  конс­  
умация  от изпитваното  вещество  е по-малка  от 60 %, 
изпитването  следва  да се повтори  с по-ниска  концентрация  на 
изпитваното  вещество . 
Вж. също  I.5.2.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1005
 
V.3.3.  Протокол  от изпитването  
Вж. I.8.  
V. 4.  ПРОТОКОЛ  ЗА ДАННИ  
Тук е даден  примерен  протокол  за данни . 
ИЗПИТВАНЕ  ЧРЕЗ  МАНОМЕТРИЧНА  РЕСПИРОМЕТРИЯ  
1. ЛАБОРАТОРИЯ  
2. ДАТА  НА ЗАПОЧВАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
3. ИЗПИТВАНО  ВЕЩЕСТВО  
Име: 
Концентрация  на изходния  разтвор : … mg/l  
Начална  концентрация  в средата , С о : … mg/l  
Обем  на колбата  за изпитване  (V): … ml  
ThOD или COD: … mg О 2 /mg изпитвано  вещество  (NH  4 
или NO  3 ) 
4. ИНОКУЛАНТ  
Източник : 
Извършена  обработка : 
Предварителна  подготовка , ако има такова : 
Концентрация  на суспендирани  частици  в реакционната  
смес : … mg/l  
5. УСВОЯВАНЕ  НА КИСЛОРОД : БИОРАЗГРАДИМОСТ  
Време  (ден) 
0 7 14 21 28  
Усвоен  О 2 
(mg) от 
изпитваното  
вещество  1 
2 
а, средно  
Усвоен  О 2 
(mg) от 
контролен  
инокулант  3 
4 
b, средно  
Коригирано  
BOD (mg) (a 1 – b  m ) 
(a 2 – b  m ) 
BOD за mg 
изпитваното  
вещество ða 1 Ä bÞ 
C o V 
ða 2 Ä bÞ 
C o V ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1006
 
Време  (ден) 
0 7 14 21 28  
% на 
разграждане  
БПК  
ThOD Ü 100  D 1 (a 1 ) 
D 2 (a 2 ) 
Средно  (*) 
V=обем  на средата  в колбата  за изпитване  
(*) D  1 и D 2 не се осредняват , ако имат  значителна  разлика . 
Забележка : Подобни  протоколи  може  да се използват  за сравнит­  
елното  вещество  и за контролата  за токсичност . 
6. КОРЕКЦИЯ  ЗА НИТРИФИКАЦИЯ  (вж. приложение  V) 
Ден 0 28 Разлика  
i) Концентрация  на нитрат  (mg N [ азот]/l) (N) 
ii) Кислороден  еквивалент (4,57 × N [ азот] × V) (mg) — — 
iii) Концентрация  на нитрит  (mg N [ азот]/l) (N) 
iv) Кислороден  еквивалент (3,43 × N [ азот] × V) (mg) — — 
ii) + iv) Общ  кислороден  еквивалент  — —  
7. АНАЛИЗ  НА ВЪГЛЕРОД  (по избор ) 
Анализатор  на въглерод : 
Време  (ден) Контрола  mg/l Изпитвано  вещество  mg/l  
0 (C  blo ) (Co) 
28 (*) (C  blt ) (C  t ) 
(*) или в края  на инкубацията  
% употребен  DОС ¼ 1 Ä C t Ä C blt 
C o Ä C blo Í Î  
Ü 100  
8. СПЕЦИФИЧНО  ВЕЩЕСТВО  (по избор ) 
S b = концентрация  на физикохимичната  (стерилна ) 
контрола  на 28-ия ден 
S a = концентрация  в колбата  с инокулата  на 28-ия ден 
% биоразграждане ¼ S b Ä S a 
S b Ü 100  
9. АБИОТИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ  (по избор ) 
а = консумация  на кислород  в стерилната  колба  след  28 
дни, mg  
консумация  на О 2 за mg изпитваното  вещество ¼ a 
C o V ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1007
 
(вж. точки  1 и 3) 
% абиотично  разграждане ¼ a Ü 100 
C o V Ü ThOD  
ЧАСТ  VI. ИЗПИТВАНЕ  ПО МЕТОДА  НА ИЗОЛИРАНИТЕ  
ПРОБИ  (МЕТОД  В.4-Д) 
VI.1. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Разтвор  на изпитваното  вещество  в минерална  среда , обик­  
новено  2—5 mg/l, се инокулира  със сравнително  малък  брой  
микроорганизми  от смесена  популация  и се държи  в пълни  
догоре , затворени  колби  на тъмно  при постоянна  температура . 
Разграждането  се следи  чрез анализ  на разтворения  кислород  
през 28-дневен  период . Количеството  на усвоения  от 
изпитваното  вещество  кислород  се коригира  с това на 
успоредно  заложения  контролен  инокулант  и се изразява  като 
процент  от ThOD или COD.  
VI.2. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
VI.2.1.  Апаратура  
а) Колби  за BOD със стъклени  запушалки , 250—300 ml.  
б) Водна  баня  или инкубатор , за съхранение  на колбите  при 
постоянна  температура  (±1  o С или по-добър ), без светлина . 
в) Големи  стъклени  колби  (2—5 литра ) за приготвяне  на среда  и 
пълнене  на колбите  за BOD.  
г) Кислороден  електрод  или оксиметър , или уреди  и реагенти  за 
титруване  по Winkler.  
VI.2.2.  Приготвяне  на минерална  среда  
За приготвянето  на изходните  разтвори  вж. I.6.2.  
Смесват  се по 1 ml от разтвори  от а) до г) и се долива  с вода  за 
разреждане  до 1 литър . 
VI.2.3.  Приготвяне  на инокулант  
Инокулант  обикновено  се взема  от оттока  на пречиствателна  
станция  или лабораторно  звено , приемащи  предимно  битови  
отпадъчни  води . Алтернативен  източник  на инокулант  са 
повърхностните  води . Нормално  се използва  от една  капка  
(0,05 ml) до 5 ml от филтрата  за 1 литър  среда . Може  да са 
необходими  допълнителни  опити , за да се открие  оптималният  
обем  за даден  отток  (вж. I.6.4.2 и I.6.5).  
VI.2.4.  Приготвяне  на колбите  
Минералната  среда  се аерира  силно  в продължение  на най-малко  
20 min. Всяка  серия  се провежда  с минерална  среда  от една  
партида . Обикновено  средата  е готова  за използване  след  
престой  от 20 часа при температурата  на изпитването . 
Определя  се концентрацията  на разтворения  кислород  с 
контролна  цел, като стойността  би следвало  да бъде  около  
9 mg/l при 20  o С. Всички  операции  на прехвърляне  и пълнене  
с наситената  с въздух  среда  се извършват  без отделяне  на 
мехурчета , например  като се използват  сифони . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1008
 
Приготвят  се успоредни  групи  от колби  за BOD за определяне  
на изпитваното  и сравнителното  вещество  в едновременни  
експериментални  серии . Събират  се достатъчен  брой  колби  за 
BOD, включително  контролен  инокулант , за да е възможно  
измерването  на потреблението  на кислород  да се прави  най- 
малко  в две повторения  на определени  интервали  от време , 
например  след  0, 7, 14, 21 и 28 дни. Може  да са необходими  
и повече  колби , за да се идентифицира  надеждно  10-дневният  
период . 
Прибавя  се напълно  аерирана  минерална  среда  към големи  
колби , така че да се напълнят  до една  трета . Тогава  се добавя  
достатъчно  количество  от изходните  разтвори  на изпитваното  
вещество  и на сравнителното  вещество  към отделни  големи  
колби , така че крайната  концентрация  на веществата  да не е 
по-висока  от 10 mg/l. В друга  голяма  колба , която  е контрола  
на минералната  среда , не се прибавят  вещества . 
За да не се ограничава  активността  на инокуланта , конце­  
нтрацията  на разтворения  кислород  не следва  да спада  под 0,5 
mg/l в колбите  за BOD. Това  ограничава  концентрацията  на 
изпитваното  вещество  до около  2 mg/l. За трудноразграждащи  
се вещества  и за такива  с ниска  ThOD, обаче , могат  да използват  
5—10 mg/l. В някои  случаи  е препоръчително  да се пуснат  
успоредни  серии  от изпитваното  вещества  в две различни  конце­  
нтрации , например  2 и 5 mg/l. Нормално  BOD се изчислява  на 
базата  на образуване  на амониеви  соли , но ако се очаква  или се 
знае, че има нитрификация , изчислява  се на базата  на 
образуване  на нитрат  (ТhOD  NO3 , вж. приложение  II.2). Ако, 
обаче , има нитрификация , но тя не е завършила , промените  в 
концентрацията  на нитрита  или нитрата  се коригират  след  
определяне  чрез анализ  (вж. приложение  V). 
Ако ще се изследва  токсичността  на веществото  (в случай , 
например , че при предишно  изпитване  е намерена  ниска  
стойност  на биоразградимост ), е необходима  друга  серия  от 
колби . 
Приготвя  се друга  голяма  колба  с аерирана  минерална  среда  (до 
около  една  трета  от обема ) плюс  изпитваното  вещество  и 
сравнителното  вещество  с крайни  концентрации , които  обик­  
новено  са същите  както  в другите  големи  колби . 
Към разтворите  в големите  колби  се прибавя  инокулант  от 
оттока  (една  капка  или около  0,05 ml до 5 ml/l) или от друг  
източник , като например  речна  вода  (вж. I.6.4.2). Накрая  разт­  
ворите  се довеждат  до обема  с аерирана  минерална  среда , като 
се използва  маркуч , който  достига  до дъното  на колбата , за да се 
осигури  подходящо  смесване . 
VI.2.5.  Брой  на колбите  при един  типичен  експеримент  
В типичен  експеримент  се използват  следните  колби : 
— най-малко  10, съдържащи  изпитвано  вещество  и инокулант  
(суспензии  за изпитване ), 
— най-малко  10, съдържащи  само  инокулант  (контролен  инок­  
улант ), 
— най-малко  10, съдържащи  сравнително  вещество  и инокулант  
(проба  за контрол  на процедурата ), ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1009
 
— и, когато  е необходимо , 6 колби , съдържащи  изпитвано  
вещество , сравнително  вещество  и инокулант  (контрола  за 
токсичност ). За да се идентифицира  със сигурност  10- 
дневният  период , са необходими  около  два пъти  повече  
колби . 
VI.2.6. Изпълнение  на изпитването  
Всеки  приготвен  разтвор  се разпределя  веднага  в съответната  
група  от колби  за BOD с маркуч , започвайки  от долната  
четвърт  (не от дъното ) на съответната  голяма  колба , до напъ­  
лването  на всички  колби  за BOD. Потупва  се леко , за да се 
освободят  всички  въздушни  мехурчета . Анализира  се разт­  
вореният  кислород  в колбите  в нулевия  момент  по Winkler 
или с електрод . Съдържанието  на колбите  може  да се 
консервира  за по-късен  анализ  по метода  на Winkler чрез 
прибавяне  на манганов  (II) сулфат  и натриев  хидроксид  (първи  
реагент  по Winkler). Внимателно  запушените  колби , съдържащи  
кислород , фиксиран  като кафяв  манганов  (III) хидратиран  оксид , 
се съхраняват  на тъмно  при 10—20  o С за не повече  от 24 часа, 
преди  да се продължат  следващите  етапи  на метода  на Winkler. 
Затварят  се останалите  повторения  на колбите , като се внимава  
да не се включат  въздушни  мехурчета , и се инкубират  при 20 o С 
на тъмно . Всяка  серия  трябва  да се придружава  от пълна  
успоредна  серия  за определяне  на контролния  инокулант . 
Отделят  се най-малко  по две колби  от всяка  серия  за анализ  
на разтворения  кислород  на определени  интервали  от време  
(най-малко  веднъж  на седмица ) по време  на 28-дневната  
инкубация . 
Ежеседмичното  вземане  на проби  позволява  оценка  на процента  
на усвояване  при 14-дневен  период , докато  вземането  на проби  
на всеки  3—4 дни позволява  да се идентифицира  10-дневният  
период , което  ще изисква  още двойно  повече  колби . 
За азот-съдържащи  изпитвани  вещества  трябва  да се направят  
корекции  за усвояването  на кислород  чрез нитрификацията . За 
да се направи  това, се определя  разтвореният  кислород  по 
метода  с кислороден  електрод  и след  това се вземат  проби  от 
колба  за БПК  за анализ  за нитрит  и нитрат . От увеличението  на 
концентрацията  на нитрита  и нитрата  се изчислява  използваният  
кислород  (вж. приложение  V). 
VI.3. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
VI.3.1.  Обработка  на резултатите  
Първо  се изчислява  BOD след  всеки  период  от време  чрез 
изваждане  на намалението  на кислорода  (mg О 2 /литър ) при 
контролния  инокулант  от това, показано  от изпитваното  
вещество . Разделя  се коригираната  стойност  с концентрацията  
(mg/l) на изпитваното  вещество , за да се получи  специфичната  
БПК  като mg кислород  на mg изпитвано  вещество . Изчислява  се 
процентът  на биоразградимост , като се разделя  специфичната  
BOD със специфичната  ThOD ( изчислена  според  
приложение  II.2) или COD ( определена  чрез анализ , вж. 
приложение  II.3), така: 
BOD ¼ ðmg O  2 поет  от изпитваното  вещество Ä mg O  2 поет  от празната  пробаÞ 
ðmg изпитвано  вещество  в колбатаÞ ¼ mg O  2 
изп : вещество  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1010
 
или 
% разграждане ¼ BOD ðmg O  2=mg изпитвано  веществоÞ 
ThODðmg O  2=mg изпитвано  веществоÞ Ü 100 
% разграждане ¼ BOD ðmg O  2=mg изпитвано  веществоÞ 
CODðmg O  2=mg изпитвано  веществоÞ Ü 100 
Трябва  да се отбележи , че тези два метода  не дават  непременно  
еднаква  стойност ; препоръчва  се използването  на последния . 
За изпитвани  вещества , които  съдържат  азот, се използва  
подходяща  ThOD (NH  4 или NO  3 ) според  това, което  се знае 
или се очаква  да стане  при наличие  на нитрификация  
(приложение  II.2). Ако има нитрификацията , но тя още не е 
завършила , корекцията  за консумиран  кислород  чрез нитрифик­  
ацията  се изчислява  от промените  в концентрацията  на нитрит  и 
нитрат  (приложение  V). 
VI.3.2.  Валидност  на резултатите  
Намалението  на кислорода  в контролния  инокулант  трябва  да 
надвишава  1,5 mg/l разтворен  кислород  след  28 дни. Стойности , 
по-високи  от тази, изискват  проверка  на експерименталните  
техники . Остатъчната  концентрация  на кислород  в изпитват­  
елните  колби  не трябва  да спада  под 0,5 mg/l през цялото  
време . Такива  ниски  кислородни  нива  са валидни  само  ако 
методът  за определяне  на разтворения  кислород  позволява  
точното  измерване  на такива  равнища . 
Вж. също  I.5.2.  
VI.3.3.  Протокол  от изпитването  
Вж. I.8.  
VI. 4. ПРОТОКОЛ  ЗА ДАННИ  
Тук е даден  примерен  протокол  за данни . 
ИЗПИТВАНЕ  ПО МЕТОДА  НА ИЗОЛИРАНИТЕ  ПРОБИ  
1. ЛАБОРАТОРИЯ  
2. ДАТА  НА ЗАПОЧВАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
3. ИЗПИТВАНО  ВЕЩЕСТВО  
Име: 
Концентрация  на изходния  разтвор : … mg/l  
Начална  концентрация  в колбата : … mg/l  
ThOD или COD: … mg О 2 /mg изпитвано  вещество  
4. ИНОКУЛАНТ  
Източник : 
Извършена  обработка : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1011
Предварителна  подготовка , ако има такова : 
Концентрация  в реакционната  смес : … mg/l  
5. ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА РАЗТВОРЕНИЯ  КИСЛОРОД  
Метод : по Winkler/c електрод  
Анализи  на съдържанието  в колбите  
Време  на инкубация  (дни) Разтворен  кислород  (mg/l) 
0 n  1 n 2 
Инокулант  без 
вещество  1 C  1 
2 C  2 
Средно  
m b ¼ C 1 þ C 2 
2 
Изпитвано  вещество  1  a  1 
2 а 2 
Средно  
m t ¼ a 1 þ a 2 
2 
Забележка : Подобни  формуляри  могат  да се използват  за 
сравнителното  съединение  и за контролата  за токсичност . 
6. КОРЕКЦИЯ  ЗА НИТРИФИКАЦИЯ  (вж. приложение  V) 
Време  на инкубация  (дни) 0 n  1 n 2 n 3 
i) Концентрация  на нитрат  (mg N [ азот]/l) 
ii) Промяна  в концентрацията  на нитрат  (mg N [ азот]/l) — 
iii) Кислороден  еквивалент  (mg/l) — 
iv) Концентрация  на нитрит  (mg N [ азот]/l) 
v) Промяна  в концентрацията  на нитрит  (mg N [ азот]/l) — 
vi) Кислороден  еквивалент  (mg/l) — 
(iii) + vi) Общ  кислороден  еквивалент  (mg/l) —  
7. НАМАЛЯВАНЕ  НА РАЗТВОРЕНИЯ  КИСЛОРОД : % 
НА РАЗГРАЖДАНЕ  
Намаляване  след  n дни (mg/l) 
n 1 n 2 n 3 
КОЛБА  1: (m  to – m  tx ) – (m  bo – m  bx ) 
КОЛБА  2: (m  to – m  tx ) – (m  bo – m  bx ) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1012
 
Намаляване  след  n дни (mg/l) 
n 1 n 2 n 3 
КОЛБА  1: 
% D  1 ¼ ½ðm to Ä m tx Þ Ä ðm bo Ä m bx Þâ Ü 100 
Конц : на изп : Ü ТhOD химикал  
КОЛБА  2: 
% D  2 ¼ ½ðm to Ä m tx Þ Ä ðm bo Ä m bx Þâ Ü 100 
Конц : на изп : Ü ТhOD химикал  
% Dсредно  (*) =  D 1 Ä D 2 
2 
(*) Не се изчислява  средна  стойност , ако има значителна  разлика  между  повторенията . 
m to = стойност  в колбата  към време  0 
m tx = стойност  в колбата  към време  х 
m bо = средна  стойност  в контролата  към време  0 
mbх = средна  стойност  в контролата  към време  х 
Прилага  се също  корекция  за нитрификация  от iii + vi в точка  6. 
8. НАМАЛЯВАНЕ  НА РАЗТВОРЕНИЯ  КИСЛОРОД  В 
КОНТРОЛНИЯ  ИНОКУЛАНТ  
Потреблението  на кислород  от контролния  инокулант  е: 
(m bo – m  b28 ) mg/l. Това  потребление  е важно  за валидността  
на изпитването . То трябва  да бъде  по-малко  от 1,5 mg/l.  
ЧАСТ  VII.  ИЗПИТВАНЕ  ПО M.I.T.I  (МЕТОД  В.4-Е) 
VII.1. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  
Усвояването  на кислород  от разтвори  при разбъркване  или от 
суспензии  на изпитваното  вещество  в минерална  среда , с инок­  
уланта  от специално  отгледани , неадаптирани  микроорганизми , 
се измерва  автоматично  за период  от 28 дни в затъмнен , 
затворен  респирометър  при 25 ± 1  o С. Отделеният  въглероден  
диоксид  се абсорбира  в натриева  вар. Биоразградимостта  се 
изразява  като процент  на усвоения  кислород  (коригиран  с 
усвояването  от контролния  инокулант ) от теоретичната  
потребност  (ThOD). Процентът  на първичната  биоразградимост  
може  да се изчисли  също  от допълнителен  специфичен  химичен  
анализ , правен  в началото  и в края  на инкубацията  или, по 
избор , чрез анализ  на разтворения  органичен  въглерод  (DOC).  
VII.2. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
VII.2.1.  Апаратура  
а) Автоматичен  електролитен  BOD-метър  или респирометър , 
нормално  съоръжен  с 6 колби , по 300 ml всяка , и с чаши , 
съдържащи  абсорбент  на СО 2 . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1013
 
б) Пространство  с постоянна  температура  и/или водна  баня  при 
25 ± 1  o С или по-добра . 
в) Устройство  за мембранно  филтруване  (по избор ). 
г) Анализатор  на въглерод  (по избор ). 
VII.2.2.  Приготвяне  на минерална  среда  
Приготвят  се следните  изходни  разтвори , като се използват  
реагенти  и вода  със степен  „чист  за анализи “ (I.6.1.): 
а) Монокалиев  дихидрогенортофосфат , КН 2 РО 4 8,50 g 
Дикалиев  монохидрогенортофосфат , К 2 НРО  4 21,75 g 
Динатриев  монохидрогенортофосфат  
додекахидрат , Na  2 HPO  4 12H  2 O 44,60 g 
Амониев  хлорид , NH  4 Cl 1,70 g 
Разтварят  ce във вода  и се доливат  до 1 литър  
Стойността  на рН на разтвора  трябва  да е 7,2 
б) Магнезиев  сулфат  хептахидрат , MgSO  4 7H 2 O 22,50 g 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър  
в) Калциев  хлорид  безводен , СаСl 2 27,50 g 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър  
г) Железен  (III) хлорид  хексахидрат , FeCl  3 6H 2 O 0,25 g 
Разтваря  се във вода  и се долива  до 1 литър  
Вземат  се по 3 ml от всеки  разтвор  а), б), в) и г) и се долива  
вода  до 1 литър . 
VII.2.3.  Приготвяне  на инокулант  
Събират  се свежи  проби  от не по-малко  от десет  места , главно  
от области , където  се използват  и изхвърлят  различни  химични  
вещества . От места  като пречиствателни  станции  на канални  и 
промишлени  отпадъчни  води , от реки , езера , морета , събират  се 
еднолитрови  проби  от утайка , повърхностна  почва , вода  и т.н. и 
се смесват  добре . След  премахване  на плуващите  материали  и 
успокояване  се регулира  рН на супернатантата  до стойност  7 ± 1 
с натриев  хидроксид  или фосфорна  киселина . 
Използва  се подходящ  обем  от филтрираната  супернатанта , за да 
се напълни  утаителен  съд за промиване  на активната  утайка , и 
течността  се аерира  в продължение  на 23 1/2 часа. Тридесет  
минути  след  спиране  на аерацията  се отлива  около  една  трета  
от целия  обем  на супернатантата , като към утаения  материал  се 
добавя  равен  обем  от разтвор  (рН 7), съдържащ  по 0,1 % от 
глюкоза , пептон  и монокалиев  ортофосфат , и се възобновява  
аерацията . Тази  процедура  се повтаря  по веднъж  на ден. 
Утаителят  трябва  да работи  по правилата  на добрата  практика : 
оттокът  трябва  да е бистър , температурата  трябва  да се 
поддържа  25 ± 2  o С, рН трябва  да е 7 ± 1, утайката  трябва  да 
е добре  утаена , трябва  да има добра  аерация , която  да поддържа  
сместа  аеробна  през цялото  време , трябва  да присъстват  първаци  
и активността  на утайката  трябва  да се изпитва  спрямо  
сравнително  вещество  най-малко  на всеки  три месеца . 
Утайката  не се използва  като инокулант , ако станцията  не е 
работила  поне  един  месец , но след  не повече  от четири  
месеца . След  това се вземат  проби  от най-малко  10 места  през 
нееднакви  интервали  от време , веднъж  на всеки  три месеца . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1014
 
За да се поддържат  свежата  и старата  утайки  с еднаква  
активност , филтруваната  супернатанта  от използваната  активна  
утайка  се смесва  с равен  обем  филтрувана  супернатанта  от 
прясно  събрана  смес  от десет  източника  и комбинираната  
течност  се култивира , както  е описано  по-горе. Утайка  за инок­  
уланта  се взема  18—24 часа след  като апаратурата  е била  
захранена . 
VII.2.4.  Приготвяне  на колбите  
Приготвят  се следните  шест  колби : 
№ 1: изпитваното  вещество  във вода  за разреждане  с конце­  
нтрация  100 mg/l  
№ 2, 3 и 4: изпитваното  вещество  в минерална  среда  с конце­  
нтрация  100 mg/l  
№ 5: сравнително  вещество  (напр . анилин ) в минерална  среда  с 
концентрация  100 mg/l  
№ 6: само  минерална  среда  
Трудноразтворимите  изпитвани  вещества  се добавят  директно , 
на базата  на обем  или тегло , или се постъпва , както  е описано  
в приложение  III, с изключение  на това, че не могат  да се 
използват  нито  разтворители , нито  емулгатори . Абсорбентите  
на СО 2 ce прибавят  към всички  колби  в специалните  чашки . 
Регулира  се рН до 7,0 в колби  с номера  2, 3 и 4. 
VII.2.5.  Изпълнение  на изпитването  
Поставя  се малък  обем  инокулант  в колби  с номера  2, 3 и 4 
(изпитвани  суспензии ), номер  5 (контрола  на активността ) и 
номер  6 (контролен  инокулант ), така че да се получи  конце­  
нтрация  на суспендираните  частици  30 mg/l. Инокулантът  не 
се прибавя  към колба  номер  1, която  служи  като абиотична  
контрола . Апаратурата  се сглобява , проверява  се за пропуски  
на въздух  и се включват  бъркалките . Започва  измерване  на 
усвояването  на кислород  на тъмно . Всеки  ден се проверяват  
температурата , разбъркването  и кулометричният  записващ  уред  
за потреблението  на кислород , като се отбелязва  всяка  промяна  
в цвета  на съдържимото  в колбите . Потреблението  на кислород  
се отчита  директно  от шест  колби  по съответен  метод , например  
с шестканален  записващ  уред , който  дава кривата  на BOD. В 
края  на инкубацията , обикновено  28 дни, се измерва  рН на 
съдържимото  в колбите  и се определя  концентрацията  на 
остатъчното  изпитвано  вещество  и разградните  му продукти  и, 
в случай  на разтворими  във вода  вещества , концентрацията  на 
DOC (приложение  II.4). Обръща  се специално  внимание  на 
летливите  вещества . Ако се очаква  нитрификация , се 
определят  концентрациите  на нитрат  и нитрит , ако е възможно . 
VII.3. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
VII.3.1.  Обработка  на резултатите  
Разделя  се потреблението  на кислород  (mg) от изпитваното  
вещество  след  дадено  време , коригирано  с това на контролния  
инокулант  за същото  време , на теглото  на използваното  за 
изпитването  вещество . Това  дава BOD, изразена  като mg 
кислород /mg изпитвано  вещество , което  е: 
BOD ¼ ðmg O  2 употребен  от изпитваното  вещество Ä mg O  2 употребен  от контролатаÞ 
ðmg изпитвано  вещество  в колбатаÞ 
= mg O  2 / mg изпитвано  вещество  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1015
 
Тогава  процентът  на биоразграждането  се получава  от: 
% биоразграждане ¼ % ThOD ¼ BOD ðmg O  2=mg веществоÞ 
ThOD ðmg O  2=mg веществоÞ Ü 100 
За смеси  ThOD ce изчислява  от елементния  анализ , както  за 
просто  съединение . Използва  се подходяща  ThOD (ThOD  NH4 
или ТhOD  NO3 ) според  това, дали  нитрификацията  липсва  или е 
пълна  (приложение  II.2). Ако обаче  има нитрификация , но тя не 
е напълно  завършена , тогава  корекцията  за усвоения  кислород  
се изчислява  от промените  в концентрациите  на нитрит  и нитрат  
(приложение  V). 
Процентът  на първоначалното  биоразграждане  се изчислява  от 
загубата  на специфично  (родителско ) химично  вещество  (вж. 
1.7.2.)  
D t ¼ S b Ä S a 
S b Ü 100  
Ако е имало  загуба  на изпитваното  вещество  в колба  номер  1, 
измерваща  физикохимичното  потребление , това се отразява  в 
протокола  и се използва  концентрацията  на изпитваното  
вещество  (S  b ) след  28 дни в тази колба , за да се изчисли  
процентът  на биоразграждането . 
Когато  е направено  определяне  на DOC (незадължително ), се 
изчислява  процентът  на пълното  биоразграждане  от: 
D t ¼ 1 Ä C t Ä C bt 
C o Ä C bo Í Î  
Ü 100  
както  е описано  в I.7.1. Ако е имало  загуба  на DOC в колба  
номер  1, измерваща  физикохимичното  изразходване , конце­  
нтрацията  на DOC в тази колба  се използва , за да се изчисли  
процентът  на биоразграждането . 
Всички  резултати  се записват  в приложените  формуляри  за 
данни . 
VII.3.2.  Валидност  на резултатите  
Потреблението  на кислород  в контролния  инокулант  е нормално  
20—30 mg O  2 /l и не трябва  да е по-високо  от 60 mg/l за 28 дни. 
Стойности , по-високи  от 60 mg/l, изискват  критична  проверка  на 
данните  и експерименталните  техники . Ако стойността  на рН е 
извън  областта  6—8,5 и потреблението  на кислород  от 
изпитваното  вещество  е по-малко  от 60 %, изпитването  трябва  
да се повтори  с по-ниска  концентрация  на изпитваното  
вещество . 
Вж. също  I.5.2.  
Ако процентът  на разграждане  на анилин , изчислен  от консум­  
ацията  на кислород , не надвишава  40 % след  7 дни и 65 % след  
14 дни, изпитването  се счита  за невалидно . 
VII.3.3.  Протокол  от изпитването  
Вж. I.8.  
VII.4. ПРОТОКОЛ  ЗА ДАННИ  
По-долу  е даден  примерен  протокол  за данни . 
ИЗПИТВАНЕ  ПО MITI (I)  
1. ЛАБОРАТОРИЯ  
2. ДАТА  НА ЗАПОЧВАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1016
 
3. ИЗПИТВАНО  ВЕЩЕСТВО  
Име: 
Концентрация  на изходния  разтвор : … mg/l като химично  
вещество  
Начална  концентрация  в средата , С о : … mg/l като химично  
вещество  
Обем  на реакционната  смес , V: ml  
ThOD: … mg O  2 /l 
4. ИНОКУЛАНТ  
Места  на вземане  на проби  от утайка : 
1) … 6) … 
2) … 7) … 
3) … 8) … 
4) … 9) … 
5) … 10) …  
Концентрация  на суспендираните  частици  в активната  
утайка  след  аклиматизация  със синтетична  отпадъчна  
вода  = mg/l  
Обем  на активната  утайка  за литър  от крайната  
среда  = ....ml  
Концентрация  на утайката  в крайната  среда  = .. .mg/l  
5. ПОТРЕБЛЕНИЕ  НА КИСЛОРОД : БИОРАЗГРАЖДАНЕ  
Вид на използвания  респирометър : 
Време  (дни) 
0 7 14 21 28  
О 2 потребление , 
(mg) от 
изпитваното  
вещество  a 1 
a 2 
a 3 
О 2 потребление , 
(mg) от 
контролата  b 
Коригирано  
потребление  на 
О 2 (mg) (a 1 – b) 
(a 2 – b) 
(а 3 – b) 
БПК  на mg 
изпитвано  
вещество ða Ä bÞ 
C o V Колба  1 
Колба  2 
Колба  3 
% на 
разграждане  
BOD 
ThOD Ü 100  1 
2 
3 
Средно  (*) 
(*) Не се изчислява  средна  стойност , ако има значителна  разлика  между  повторенията . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1017
 
Забележка : Подобни  протоколи  могат  да се използват  за 
сравнителното  съединение . 
6. АНАЛИЗ  НА ВЪГЛЕРОД  (по избор ) 
Анализатор  на въглерод : 
Колба  DOC % DOC 
изразходван  Средно  
измерен  коригиран  
Вода  + изпитвано  вещество  а — — 
Утайка  + изпитвано  
вещество  b 1 b 1 -с 
Утайка  + изпитвано  
вещество  b 2 b 2 – с 
Утайка  + изпитвано  
вещество  b 3 b 3 – с 
Контрола  с — — —  
% разграден ¼ a 1 Ä ðb Ä cÞ 
a Ü 100  
7. ДАННИ  ОТ СПЕЦИФИЧЕН  ХИМИЧЕН  АНАЛИЗ  
Остатъчно  количество  от изпитвано  
вещество  в края  на изпитването  % на разграждане  
Контролна  проба  с вода  S  b 
Среда  с инокулант  S al 
S a2 
S a3 
% разграждане ¼ S b Ä S a 
S b Ü 100  
Изчислява  се процент  разграждане  съответно  за колби  
a l и а 3 . 
8. 3АБЕЛЕЖКИ  
Следва  да се приложи  крива  за BOD във времето , ако има 
такава . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1018
 
Приложение  I 
СЪКРАЩЕНИЯ  И ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
DO: Разтворен  кислород  (mg/l) е концентрацията  на разтворения  
кислород  в една  водна  проба . 
BOD: Биохимична  потребност  от кислород  (g) е количеството  кислород , 
консумирано  от микроорганизмите  при метаболизиране  на едно  
изпитвано  съединение , изразявано  също  така като g усвоен  
кислород  за g от изпитваното  съединение  (Виж  метод  С.5) 
COD: Химична  потребност  от кислород  (g) е количеството  кислород , 
използвано  при на окисляването  на едно  изпитвано  съединение  с 
горещ , кисел  бихромат ; представлява  мярка  за количеството  на 
наличната  окислима  материя . Изразява  се също  така като g 
кислород , усвоен  за g от изпитваното  съединение  (Виж  метод  С.6). 
DOC: Разтворен  органичен  въглерод  е органичният  въглерод , присъстващ  
в разтвора  или който  преминава  през филтър  0,45 μm, или остава  в 
супернатанта  след  центрофугиране  при 40 000 m.s  -2 (± 4 000 g) за 
15 min.  
ThOD: Теоретична  потребност  от кислород  (mg) е общото  количество  
кислород , необходимо  за пълното  окисляване  на едно  химично  
вещество . То се изчислява  от молекулната  формула  (вж. 
приложение  II. 2) и се изразява  също  като mg кислород , 
необходим  за mg от изпитваното  съединение . 
ThCO  2 : Теоретичен  въглероден  диоксид  (mg) е изчисленото  количество  
въглероден  диоксид , което  ще се получи  от известно  или 
измерено  съдържание  на въглерод  в изпитваното  съединение , 
когато  то бъде  напълно  минерализирано . Изразява  се също  като 
mg въглероден  диоксид , отделян  от mg от изпитваното  съединение . 
TOC: Общ  органичен  въглерод  в пробата  е сумата  от органичния  
въглерод  в разтвора  и в суспензията . 
IC: Неорганичен  въглерод  
ТС: Общ  въглерод  е сумата  от органичния  и неорганичния  въглерод  в 
една  проба . 
Първично  биологично  разграждане : 
е изменение  на химичната  структура  на едно  вещество , причинено  от 
биологично  действие , и имащо  за резултат  загуба  на специфично  свойство  
на това вещество . 
Пълно  биологично  разграждане  (аеробно ): 
е равнището  на постигнато  разграждане , когато  изпитваното  съединение  е 
напълно  усвоено  от микроорганизмите  и в резултат  на това са произведени  
въглероден  диоксид , вода , минерални  соли  и нови  микробни  клетъчни  
съставки  (биомаса ). 
Лесно  биоразградими : 
Условна  класификация  на химичните  вещества , които  са преминали  през 
определени  изпитвания  за пълна  биоразградимост . Тези  изпитвания  са 
толкова  неоспорими , че се счита , че такива  съединения  бързо  и напълно  
се разграждат  биологично  във водна  среда  при аеробни  условия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1019
 
Присъщо  биоразградими : 
Класификация  на химични  вещества , за които  има неоспорими  доказат­  
елства  за биологично  разграждане  (първично  или пълно ) от което  и да е 
признато  изпитване  за биоразградимост . 
Склонност  към третиране : 
Способността  на съединенията  да бъдат  отстранявани  при биологичната  
преработка  на отпадъчни  води , без да повлияват  вредно  нормалното  
протичане  на процесите  на третиране . Най-общо  бързо  разградимите  
съединения  подлежат  на третиране , но това не важи  за всички  присъщо  
биоразградими  съединения . Абиотични  процеси  могат  също  да действат . 
Латентно  време  (лаг-фаза ): 
Времето  от посяването  на инокуланта  (при изследване  чрез скоростта  на 
отмиране ), докато  процентът  на разграждане  се увеличи  най-малко  до 10. 
Латентното  време  често  е много  променливо  и слабо  възпроизводимо . 
Време  на разграждане : 
Времето  от края  на латентното  време  до времето , при което  са достигнати  
90 % от максималното  равнище  на разграждане . 
10-дневен  период : 
10-те дни, които  непосредствено  следват  достигане  на 10 % разграждане . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1020
 
Приложение  II 
ИЗЧИСЛЯВАНЕ  И ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА ПОДХОДЯЩИ  ОБОБЩЕНИ  
ПАРАМЕТРИ  
В зависимост  от избрания  метод  ще се изискват  определени  обобщени  
параметри . Следващата  част описва  получаването  на тези стойности . 
Използването  на тези параметри  е описано  при отделните  методи . 
1. Съдържание  на въглерод  
Съдържанието  на въглерод  се изчислява , когато  елементният  състав  е 
известен , или от данните  от елементния  анализ  на изпитваното  вещество . 
2. Теоретична  потребност  от кислород  (ThOD)  
Теоретичната  потребност  от кислород  (ThOD) може  да бъде  
изчислена , ако елементният  състав  е известен  или е определен  чрез 
елементен  анализ . Така  за съединението : 
C c H h Cl cl N n Na na O o P p S s 
без нитрификация , 
ThOD  NH4 ¼ 16 ½2 c þ 1=2 ðh Ä cl Ä 3 nÞ þ 3 s þ 5=2 p þ 1=2 na Ä oâ 
MW  mg/mg  
или с нитрификация  
ThOD  NO3 ¼ 16 ½2 c þ 1=2 ðh Ä clÞ þ 5=2 n þ 3 s þ 5=2 p þ 1=2 na Ä oâ 
MW  mg/mg  
3. Химична  потребност  от кислород  (COD)  
Химичната  потребност  от кислород  (COD) се определя  според  
метод  В.6. 
4. Разтворен  органичен  въглерод  (DOC)  
Разтвореният  органичен  въглерод  (DOC) е по определение  разт­  
вореният  органичен  въглерод  на всяко  химично  вещество  или смес  
във вода , преминаващи  през филтър  0,45 μm. 
Пробите  се вземат  от съдовете  за изпитване  и веднага  се филтрират  с 
апаратура  за филтриране , използвайки  подходящ  мембранен  филтър . 
Първите  20 ml (количеството  може  да се намали , когато  се използват  
малки  филтри ) от филтрата  се изхвърлят . Обеми  от по 10—20 ml или 
по-малки , ако ще се инжектират  (обемът  зависи  от количеството , необ­  
ходимо  за анализатора  на въглерод ), се оставят  за анализ  на въглерод . 
Концентрацията  на DOC ce определя  с апарат  за анализ  на органичен  
въглерод , който  е способен  да измерва  точно  концентрации  на 
въглерод , равни  или по-ниски  от 10 % от началната  концентрация  
на DOC, използвана  при изпитването . 
Филтрираните  проби , които  не могат  да бъдат  анализирани  
същия  работен  ден, се оставят  в хладилник  при 2—4  o С за 48 часа 
или под — 18  o С за по-дълги  периоди . 
Забележки : 
Мембранните  филтри  често  са импрегнирани  с повърхностноактивни  
вещества , които  им осигуряват  хидрофилност . В такъв  случай  
филтърът  може  да съдържа  до няколко  mg разтворим  органичен  
въглерод , който  да пречи  на определянето  на биологичната  
разградимост . Повърхностноактивни  вещества  и други  разтворими  
органични  съединения  се премахват  от филтрите  чрез варене  в 
дейонизирана  вода  3 пъти  по 1 час. Филтрите  след  това се съхраняват  
във вода  за 1 седмица . Ако се използват  филтърни  патрони  за 
еднократна  употреба , всяка  партида  следва  да се проверява  дали  
отделя  разтворим  органичен  въглерод . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1021
 
В зависимост  от типа  на мембранния  филтър  изпитваното  вещество  
може  да се задържи  чрез адсорбция . Тогава  следва  да се получи  
сигурност , че изпитваното  вещество  не се задържа  върху  филтъра . 
Вместо  филтриране , за отделяне  на TOC от DOC може  да се използва  
центрофугиране  при 40 000 m. s  -2 (4 000 g) за 15 min. Методът  не е 
надежден  при начални  концентрации  < 10 mg DOC/l, ако или не са 
премахнати  всички  бактерии , или въглеродът  като част от 
бактериалната  плазма  се е разтворил  повторно . 
ПРЕПРАТКИ  
(1) Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, 
12 th ed, Am. Pub. Hlth. Ass., Am. Wat. Poll. Control Fed., Oxygen 
Demand, 1965, P. 65;  
(2) Wagner, R., Von Wasser, 1976, vol. 46, 139;  
(3) DIN-Entwurf 38409 Teil 41 Deutsche Einheitsverfahren zur Wasser-, 
Abwasser-und Schlammuntersuchung, Summarische Wirkungs- und Stoffkenngrosen (Gruppe H). Bestimmung des Chemischen Sauerstoff ­
bedarfs (CSB) (H 41), Normenausschus (NAW) in DIN Deutsches 
Institut fur Normung e. V.;
 
(4) Gerike, P., The biodegradability testing of poorly watersoluble 
compounds. Chemosphere, 1984, vol 13(1), 169;  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1022
 
Приложение  III 
ОЦЕНКА  НА БИОЛОГИЧНАТА  РАЗГРАДИМОСТ  НА 
ТРУДНОРАЗТВОРИМИ  ВЕЩЕСТВА  
При изпитванията  за биологична  разградимост  на трудноразтворими  
вещества  следва  да се обърне  внимание  на следните  аспекти . 
Докато  хомогенните  течности  рядко  биха  създали  проблем  при вземането  на 
проба , препоръчва  се твърдите  материали  да се хомогенизират  по съответен  
начин , за да се избегнат  грешки , дължащи  се на липсата  на хомогенност . 
Следва  особено  да се внимава , когато  се вземат  представителни  проби  от по 
няколко  mg от смеси  на химични  вещества  или от вещества , съдържащи  
големи  количества  примеси . 
По време  на изпитването  могат  да се използват  различни  форми  на 
разбъркване . Следва  да се използва  само  разбъркване  дотолкова , че да се 
поддържа  химичното  вещество  диспергирано , без да се стига  до претопляне , 
образуване  на много  пяна  или излишни  сили  на разкъсване . 
Може  да се използва  емулгатор , даващ  стабилна  дисперсия  на химичното  
вещество . Той следва  да не е токсичен  за бактериите , не следва  да е 
биоразградим  и да причинява  образуване  на пяна  при условията  на 
изпитването . 
Същите  критерии  се прилагат  за разтворителите , както  и за емулгаторите . 
Не се препоръчва  използване  на твърди  носители  при изпитване  на твърди  
вещества , но те могат  да са подходящи  сами  за себе си. 
Когато  се използват  допълнителни  вещества , като емулгатори , разтворитери  
и носители , следва  да се пусне  контролна  проба  с тях. 
Всеки  от трите  респирометрични  метода  за СО 2 , BOD, MITI може  да се 
използва  за проучване  на биоразградимостта  на трудноразтворими  
съединения . 
ПРЕПРАТКИ  
— (1) de Morsier, A. et al., Biodegradation of poorly soluble compounds. 
Chemosphere, 1987, vol. 16, 833.  
— (2) Gerike, P., The Biodegradability testing of poorly water soluble 
compounds. Chemosphere, 1984, vol. 13, 169.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1023
 
Приложение  IV 
ОЦЕНКА  НА БИОЛОГИЧНОТО  РАЗГРАЖДАНЕ  НА ВЕЩЕСТВИ , 
ЗА КОИТО  СЕ ПРЕДПОЛАГА /ПОДОЗИРА , ЧЕ СА ТОКСИЧНИ  
КЪМ  ИНОКУЛАНТА  
Когато  дадено  химично  вещество  е подложено  на изпитване  за лесна  
биоразградимост  и се оказва , че не е биоразградимо , се препоръчва  
следната  процедура , ако е желателно  да се разбере  дали  инхибира  или е 
инертено  (Reynolds et al., 1987).  
Подобни  или идентичени  посявки  следва  да се използват  при изпитванията  
за токсичност  и биологично  разграждане . 
За да се оцени  токсичността  на химичното  вещество , изпитвано  в 
изпитванията  за лесна  биоразградимост , изглеждат  подходящи  един  или 
комбинация  от следните  методи : за инхибиране  скоростта  на дишане  на 
активната  утайка  (изпитване  за инхибиране  респирацията  на активната  
утайка ), за BOD и/или за инхибиране  на растежа . 
Ако следва  да се избегне  инхибиране , дължащо  се на токсичност , се 
препоръчва  концентрациите  на изпитваното  вещество  при изпитването  за 
лесна  биоразградимост  да са по-ниски  от 1/10 от стойностите  на ЕС 50 (или 
по-ниски  от стойностите  на ЕС 20 ) получени  при изпитването  на токсич­  
ността . Съединения  със стойности  на ЕС 50 , по-високи  от 300 mg/l, не е 
вероятно  да имат  токсични  ефекти  при изпитването  за лесна  
биоразградимост . 
Стойности  на ЕС 50 , по-ниски  от 20 mg/l, биха  поставили  сериозни  проблеми  
при последващото  изпитване . Следва  да се използват  ниски  концентрации , 
които  се нуждаят  от използване  на строгия  и чувствителен  метод  на 
изолираните  проби  или на материал , белязан  с 14 С. Друга  възможност  е, 
че един  аклиматизиран  инокулант  би позволил  да се използват  по-високи  
концентрации  при изпитването . В последния  случай  обаче  се загубва  
критерият  за лесна  биоразградимост . 
ПРЕПРАТКИ  
Reynolds, L. et al., Evaluation of the toxicity of substances to be assessed for 
biodegradability. Chemosphere, 1987, vol. 16, 2259  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1024
 
Приложение  V 
КОРЕКЦИЯ  НА ПОТРЕБЛЕНИЕТО  НА КИСЛОРОД  ПРИ  
ПОВЛИЯВАНЕ  ЧРЕЗ  НИТРИФИКАЦИЯ  
Грешките , дължащи  се на факта , че не е взета  предвид  нитрификацията  при 
оценката  на потреблението  на кислород  при изпитването  за 
биоразградимост  на несъдържащи  азот вещества , са незначителни  (не по- 
големи  от 5 %), даже  ако окисляването  на амониевия  азот в средата  е 
непостоянно  както  в опитните  съдове , така и в съдовете  с контролния  
инокулант . При азот-съдържащи  изпитвани  вещества  обаче  могат  да 
възникнат  сериозни  грешки . 
Ако е налице  нитрификация , но тя не е завършена , наблюдаваното  потребление  
на кислород  в реакционната  среда  може  да се коригира  с количеството  
кислород , използвано  за окисляване  на амоняка  до нитрит  или нитрат . Това  
има място , ако промените  в концентрацията  на нитрити  и нитрати  по време  
на инкубацията  са определени , като се отчитат  следните  уравнения : 
2 NH  4 Cl + 3O  2 = 2 HNO  2 + 2 HCl + 2H  2 O (1) 
2HNO  2 +O 2 = 2HNO  3 (2) 
Или обобщено : 
2 NH  4 Cl + 4O  2 = 2 HNO  3 + 2 HCl + 2 H  2 O (3)  
От уравнение  (1) потреблението  на кислород  от 28 g азот, съдържащ  се в 
амониевия  хлорид  (NH  4 Cl), който  се окислява  до нитрит , е 96 g, т.е. фактор  
3,43 (96/28). По същият  начин  от уравнение  (3) потреблението  на кислород  
от 28 g азот, окислен  до нитрат , е 128 g, т.е. коефициент  4,57 (128/28).  
Тъй като реакциите  са последователни , извършвани  от отделни  и различни  
бактериални  видове , е възможно  концентрацията  на нитрита  да се увеличава  
или намалява , като в последния  случай  може  да се получи  еквивалентна  
концентрация  на нитрат . Така  кислородът , консумиран  за образуване  на 
нитрат , е 4,57, умножено  по увеличението  на концентрацията  на нитрата , 
докато  кислородът , консумиран  за образуването  на нитрит , е 3,43, 
умножено  по увеличението  на концентрацията  на нитрита , или с 
намаляването  на неговата  концентрация  загубата  на кислород  е - 3,43, 
умножено  с намаляването  на концентрацията . 
Това  означава : 
О 2 , консумиран  при образуване  на нитрат  = 4,57 × увел­  
ичението  на концентрацията  на нитрат  (4) 
и 
О 2 , консумиран  при образуване  на нитрит  = 3,43 × увел­  
ичението  на концентрацията  на нитрит  (5) 
и 
О 2 , изгубен  при преобразуването  на нитрит  = - 3,43 × 
намалението  на концентрацията  на нитрит  (6) 
Така  че: 
Потреблението  на О 2 , дължащо  се на нитрификация  = ± 3,43 
× изменението  на концентрацията  на нитрит  + 4,57 × увел­  
ичението  на концентрацията  на нитрат  (7) 
И така: 
Потреблението  на О 2 , дължащо  се на окисление  на 
въглерода  = общото  наблюдавано  потребление  – 
потреблението , дължащо  се на нитрификация  (8) 
Алтернативно , когато  е определен  само  общият  окислен  N, потреблението  
на кислород , дължащо  се на нитрификация , може  да се вземе  на първо  
приближение  като 4,57 × увеличението  на окисления  N. 
Тогава  коригираната  стойност  на консумацията  на кислород , дължаща  се на 
окисление  на въглерода , след  това се сравнява  с ТhOD NH  3 , както  е 
изчислено  в приложение  II. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1025
 
В.5. РАЗГРАЖДАНЕ  — БИОХИМИЧНА  ПОТРЕБНОСТ  ОТ 
КИСЛОРОД  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на метода  е измерване  на биохимичната  потребност  от 
кислород  (BOD) на твърди  или течни  органични  вещества . 
Данните , получени  при това изпитване , се отнасят  за разтворими  
във вода  съединения . Летливи  съединения  и такива  с ниска  разт­  
воримост  във вода  могат  също  да се изпитват , най-малко  по 
принцип . 
Методът  е приложим  за изпитване  на онези  органични  
материали , които  не са инхибиращи  за бактерии  при конце­  
нтрациите , използвани  при изпитването . Ако изпитваният  
материал  не е разтворим  при изпитваните  концентрации , се 
прилагат  специални  мерки , като използване  на ултразвук , за да 
се получи  добро  диспергиране  на изпитвания  материал . 
При избора  на подходящи  концентрации  на изпитване  и при 
интерпретирането  на ниски  резултати  може  да бъде  полезна  
информацията  за токсичността  на химичното  вещество . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
BOD ce определя  като масата  на разтворения  кислород , необ­  
ходима  за определен  обем  от разтвора  на веществото , за да 
извърши  биохимично  окисление  при зададени  условия . 
Резултатите  се изразяват  като грамове  BOD на грам  от 
изпитваното  вещество . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Желателно  е използването  на вещество  за сравнение , за да се 
провери  активността  на културата . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
В предварително  определено  количество  от веществото , разт­  
ворено  или диспергирано  в добре  аерирана  подходяща  среда , 
се поставя  култура  от микроорганизми  и се инкубира  при 
определена  постоянна  околна  температура  на тъмно . 
BOD се определя  от разликата  в съдържанието  на разтворен  
кислород  в началото  и в края  на изпитването . Продължит­  
елността  на изпитването  следва  да бъде  най-малко  пет дни и 
не повече  от 28 дни. 
Определя  се и една  празна  проба , пусната  успоредно , но несъ­  
държаща  изпитваното  вещество . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Определянето  на BOD не може  да се счита  като валидно  за 
определяне  на биоразградимостта  на дадено  вещество . Това  
изпитване  може  да се разглежда  само  като изпитване  за 
скрининг . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Приготвят  се предварителни  разтвори  или дисперсии  на 
веществото , за да се получи  концентрация  на БПК , подходяща  
за използвания  метод . BOD тогава  се определя , като се следва  
подходящ  национален  или международен  стандартизиран  метод . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1026
 
2. ДАННИ  И ИЗЧИСЛЕНИЯ  
БПК , съдържаща  се в предварителния  разтвор , се изчислява  по 
избран  стандартизиран  метод  и се превръща  в грамове  BOD на 
грам  от изпитваното  вещество . 
3. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Следва  да се цитира  използваният  метод . 
Биохимичната  потребност  от кислород  следва  да е средна  
стойност  от най-малко  три валидни  измервания . 
Цялата  информация  и забележките  с отношение  към 
интерпретирането  на резултатите  следва  да се отразят  в прот­  
окола , по-специално  от гледище  на примесите , физическото  
състояние , токсичните  ефекти  и присъщия  състав  на веществото , 
които  биха  повлияли  на резултатите . 
Използването  на добавки  за инхибиране  на биологичната  
нитрификация  следва  да се отрази  в протокола . 
4. ПРЕПРАТКИ  
Списък  на стандартизираните  методи , например : 
NF T 90 -103: Determination of the biochemical oxygen demand.  
NBN 407: Biochemical oxygen demand.  
NEN 32355.4: Bepaling van het biochemish zuurstofverbruik 
(BZV).  
The determination of biochemical oxygen demand, Methods for 
the examination of water and associated materials, HMSO, 
London.  
ISO 5815: Determination of biochemical oxygen demand after n 
days. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1027
 
В.6. РАЗГРАЖДАНЕ  — ХИМИЧНА  ПОТРЕБНОСТ  ОТ 
КИСЛОРОД  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на метода  е измерване  на химичната  потребност  от 
кислород  (COD) на твърди  или течни  органични  вещества  по 
произволно  избран  стандартен  начин  при фиксирани  
лабораторни  условия . 
Информация  за формулата  на веществото  ще бъде  полезна  при 
провеждането  на настоящото  изпитване  и при интерпретиране  
на получения  резултат  (например  соли  на халогени , железни  
соли  на органични  съединения , хлорсъдържащи  органични  
съединения ). 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И МЕРНИ  ЕДИНИЦИ  
Химичната  потребност  от кислород  е мярка  за окисляемостта  на 
веществото , изразена  като еквивалентното  количество  кислород  
на един  оксидиращ  агент , усвоено  от веществото  при фиксирани  
лабораторни  условия . 
Резултатът  се изразява  като грамове  COD на грам  от 
изпитваното  вещество . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Не винаги , когато  се изпитва  ново  вещество , има нужда  от 
използване  на вещества  за сравнение . Те следва  да служат  
най-вече за калибриране  на метода  от време  на време  и да 
позволят  сравнение  на резултатите , когато  е приложен  друг  
метод . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Предварително  определено  количество  от веществото , разт­  
ворено  или диспергирано  във вода , се окислява  на обратен  
хладник  с калиев  дихромат  в силна  сернокисела  среда  със 
сребърен  сулфат  като катализатор  в продължение  на два часа. 
Остатъчният  дихромат  се определя  чрез титруване  със 
стандартизиран  фероамониев  сулфат . 
В случай  на хлорсъдържащи  вещества  се прибавя  живачен  
сулфат  ( 1 ), за да се намали  пречещото  влияние  на хлора . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Поради  произволния  начин  на определяне  COD е „индикатор  за 
окисляемост “ и като такъв  се използва  като практически  метод  
за измерване  на органична  материя . 
Хлоридите  могат  да пречат  на това изпитване . Неорганични  
редуциращи  или оксидиращи  агенти  също  могат  да пречат  на 
определянето  на COD.  
Някои  циклични  съединения  и много  летливи  вещества  (напр . 
нискомолекулни  мастни  киселини ) не се окисляват  напълно  при 
това изпитване . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Предварителният  разтвор  или дисперсия  на веществото  се 
приготвя  така, че да се получи  ХПК  между  250 и 600 mg/l.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1028  
( 1 ) След  използване  разтворите , съдържащи  живачни  соли , следва  да се обработят , за 
да се избегне  разнасяне  на живак  в околната  среда
 Забележки : 
В случай  на трудноразтворими  или недиспергиращи  се вещества  
се претегля  фина  пудра  от веществото  или течно  вещество  в 
количество , отговарящо  на 5 mg COD и се поставя  в експериме­  
нталната  апаратура  с вода . 
Химичната  потребност  от кислород  (COD) често  и специално  в 
случай  на трудно  разтворими  вещества  се определя  успешно  в 
един  вариант  на метода , т.е. в затворена  система  с изравнител  на 
налягането  (Н. Kelkenberg, 1975). При тази модификация  
съединения , които  трудно  се определят  по конвенционалния  
метод , например  оцетна  киселина , могат  често  да бъдат  
успешно  определени  количествено . Методът , обаче  не работи  
в случай  на пиридин . Ако концентрацията  на калиев  дихромат , 
както  е предписано  в позоваване  1 се повиши  до 0,25 N (0,0416 
mol/l), директното  претегляне  на 5—10 mg от веществото  се 
улеснява , което  е много  важно  за определянето  на COD на 
вещества , трудно  разтворими  във вода  (позоваване  2). 
От друга  страна  COD се определя , като се следва  който  и да е 
подходящ  национален  или международен  стандартизиран  метод . 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
COD, съдържаща  се в експерименталната  колба , се изчислява  
като се следва  избран  стандартизиран  метод  и се превръща  в 
грамове  COD на грам  от изпитваното  вещество . 
3. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
В протокола  се отразява  използвания  метод  за сравнение . 
Химичната  потребност  от кислород  трябва  да е средна  стойност  
от най-малко  три измервания . Цялата  информация  и забележки , 
отнасящи  се до интерпретирането  на резултатите , трябва  да се 
запишат  в протокола , особено  отнасящите  се до примесите , 
физично  състояние , токсични  ефекти  и присъщи  свойства  на 
веществото  (ако са известни ), които  биха  повлияли  на резулт­  
атите . 
Трябва  да се отрази  и използването  на живачен  сулфат , за да се 
намали  пречещото  влияние  на хлоридите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Kelkenberg, H., Z. von Wasser und Abwasserforschung, 1975, 
vol. 8, 146.  
(2) Gerike, P. The biodegradability testing of poorly water soluble 
compounds. Chemosphere, 1984, vol. 13,169.  
Списък  на стандартизирани  методи , например : 
NBN T 91-201 Determination of the chemical oxygen 
demand.  
ISBN O 11 7512494 Chemical oxygen demand (dichromate 
value) of polluted and waste waters.  
NF T 90-101 Determination of the chemical oxygen demand.  
DS 217 = water analysis Determination of the chemical 
oxygen demand.  
DIN 38409-H-41 Determination of the chemical oxygen 
demand (COD) within the range above 15 mg per litre.  
NEN 3235 5.3 Bepaling van het chemisch zuurstofverbruik.  
ISO 6060 Water quality: chemical oxygen demand dich ­
romate methods.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1029
 
В.7. РАЗГРАЖДАНЕ  — АБИОТИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ : 
ХИДРОЛИЗА  КАТО  ФУНКЦИЯ  ОТ РН 
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  на изпитване  е еквивалентен  на метода  
TG 111 (2004) на ОИСР . 
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Химичните  вещества  могат  да проникнат  в повърхностните  води  
по такива  начини  като директното  прилагане , отнасяне  на спрей  
при пръскане , повърхностен  отток , дренажни  води , депониране  
на отпадъци , промишлени , битови  или селскостопански  
отпадъчни  води  и отлагания  от атмосферата  и могат  да се 
преобразуват  в тези води  от химични  (напр . хидролиза , окис­  
ление ), фотохимични  и/или микробиологични  процеси . Тези  
насоки  описват  лабораторен  изпитателен  метод  за оценка  на 
абиотично  хидролитично  преобразуване  на химичните  
вещества  във водни  системи  при стойности  на рН, които  се 
срещат  обикновено  в околната  среда  (рН 4—9) и е на 
основата  на съществуващи  ръководства  (1)(2)(3)(4)(5)(6)(7).  
Опитите  са проведени , за да се определи  i) степента  на 
хидролиза  на изпитваното  вещество  като функция  на рН и ii) 
същността  или природата  и степента  на образуване  и разпадане  
на продукти  на хидролиза , на които  могат  да бъдат  изложени  
организмите . Такива  проучвания  може  да се изискват  за 
химични  вещества , които  се прилагат  директно  към водата  или 
за които  има вероятност  да стигнат  до околната  среда  по 
другите  пътища , описани  по-горе. 
1.2 ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И ЕДИНИЦИ  
Вж. приложение  2. 
1.3 ПРИЛОЖИМОСТ  НА МЕТОДА  
Изпитването  е общоприложимо  за химични  вещества  
(маркирани  или немаркирани ), за които  съществува  достатъчно  
точен  и чувствителен  аналитичен  метод . Приложим  е за слабо  
летливи  и нелетливи  съединения , достатъчно  разтворими  във 
вода . Изпитването  не трябва  да се прилага  при химични  
вещества , които  са силно  летливи  във вода  (напр . фумиганти , 
органични  разтворители ) и по тази причина  не могат  да бъдат  
запазени  в разтвор  съгласно  условията  на изпитване  за 
настоящото  изпитване . Провеждането  на изпитването  с 
вещества , които  са много  слабо  разтворими  във вода  е 
възможно  да бъде  трудно  (8). 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Стерилни  водни  буферни  разтвори  с различни  рН стойности  
(рН 4, 7 и 9) се обработват  с веществото  на изпитване  и се 
инкубират  на тъмно  при контролирани  лабораторни  условия  
(при постоянна  температура ). След  подходящи  интервали  
време  буферните  разтвори  се изследват  за изпитваното  
вещество  и за продукти  на хидролиза . С маркирано  вещество  
на изпитване  (напр . с 14 С) масовият  баланс  може  да се 
извърши  по-лесно . 
Настоящият  метод  на изпитване  е замислен  като стъпален  
подход , който  е показан  и обяснен  в приложение  1. Всяка  
стъпало  резултати  е предизвикано  от резултатите  от 
предходното  стъпало . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1030
 
1.5. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
За измерване  на степента  на хидролиза  може  да бъде  използвано  
немаркирано  или маркирано  вещество  на изпитване . Като  цяло  
за изучаване  на пътя , по който  протича  хидролизата  и за 
извършване  на масовия  баланс  се предпочита  маркиран  
материал ; все пак в специални  случаи  маркирането  може  да не 
е абсолютно  необходимо . Маркирането  с 14 С е препоръчително , 
но използването  на други  изотопи  като  13 С, 15 N, 3 H също  може  
да бъде  полезно . Доколкото  е възможно , маркирането  трябва  да 
стане  в най-стабилната (ите) част(и) на молекулата . Например , 
ако веществото  на изпитване  съдържа  един  пръстен , необходимо  
е да се маркира  този пръстен ; ако веществото  на изпитване  
съдържа  два или повече  пръстена , може  да се наложат  
отделни  изследвания , за да се определи  участта  на всички  
маркирани  пръстени  и да се получи  подходяща  информация  за 
формирането  на хидролизни  продукти . Чистотата  на 
изпитваното  вещество  трябва  да е най-малко  95 %.  
Преди  извършване  на изпитването  на хидролиза , трябва  да е 
налична  следната  информация  за изпитваното  вещество : 
а) разтворимост  във вода  [Метод  на изпитване  А.6]; 
б) разтворимост  в органични  разтворители ; 
в) налягане  на парите  [Метод  на изпитване  А.4] и/или константа  
от закона  на Хенри ; 
г) коефициент  на разпределение  n-октанол /вода  [Метод  на 
изпитване  А.8]; 
д) константа  на дисоциация  (рK а ) [Ръководство  на ОИСР  112] (9);  
е) там където  е необходимо , степен  на пряка  и непряка  
фототрансформация  във вода . 
Трябва  да са налични  аналитични  методи  за количествено  
определяне  на изпитваното  вещество  и, ако е необходимо  за 
откриване  и количествено  определяне  на хидролизни  продукти  
във водни  разтвори  (вж. също  точка  1.7.2).  
1.6. ВЕЩЕСТВА  ЕТАЛОНИ  
Там където  е възможно , трябва  да се използват  еталонни  
вещества  за откриване  и количествено  определяне  на 
хидролизни  продукти  чрез спектроскопски  и хроматографски  
методи  или други  методи  с подходяща  чувствителност . 
1.7. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
1.7.1.  Аналитичен  добив  
Анализ  на поне  два буферни  разтвора  или на екстрактите  им 
веднага  след  добавянето  на изпитваното  вещество  дава 
първите  показания  за повторяемостта  на аналитичния  метод  и 
за еднородността  на процедурата  на прилагане  за изпитваното  
вещество . Аналитичните  добиви  на химичните  вещества  на по- 
късни  етапи  от експериментите  се получават  от съответните  
масови  баланси  (когато  е използван  маркиран  материал ). Анал­  
итичните  добиви  трябва  да са в границите  90 %—110 % за 
маркирани  и немаркирани  химични  вещества  (7). В случай , че 
е технически  трудно  да се постигне  този порядък , за 
немаркирани  материали  може  да се приеме  аналитичен  добив  
от 70 %, но трябва  да се придружи  с обяснение . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1031
 
1.7.2.  Повторяемост  и чувствителност  на аналитичния  метод  
Повторяемостта  на аналитичния (ите) метод (и), използван (и) за 
количествено  определяне  на изпитваното  вещество  и 
хидролизни  продукти  по-късно  може  да бъде  проверена  чрез 
повторен  анализ  на същите  буферни  разтвори  (или на техните  
екстракти ), след  като са се формирали  достатъчни  количества  
хидролизни  продукти  за количествено  определяне . 
Аналитичният  метод  трябва  да е достатъчно  чувствителен , за да 
бъдат  определени  количествено  концентрациите  на изпитваното  
вещество  до 10 % или по-малко  от първоначалната  конце­  
нтрация . Ако е необходимо , аналитичните  методи  също  трябва  
да са достатъчно  чувствителни  за количествено  определяне  на 
хидролизни  продукти , които  представляват  10 % или повече  от 
приложеното  вещество  (по всяко  време  на изследването ) и до 
25 % или по-малко  от максимално  достигнатата  концентрация  
1.7.3.  Интервали  на доверие  на кинетичните  данни  на 
хидролизата  
Интервалите  на доверие  следва  да бъдат  изчислени  и 
представени  за всички  коефициенти  на регресия , скоростни  
константи , времена  на полуразпад  и други  кинетични  
параметри  (напр . DT50).  
1.8. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.8.1.  Оборудване  и прибори  
Изследването  следва  да се проведе  в стъклени  съдове  (напр . 
епруветки , малки  колби ), ако е необходимо  на тъмно  и при 
условия  на стерилност , освен  ако предварителна  информация  
(като коефициентът  на разпределение  n-октанол -вода ) не 
показва , че изпитваното  вещество  може  да се полепи  по 
стъклото . В такива  случаи  могат  да се използват  алтернативни  
материали  (като тефлон ). Може  да е възможно  и намаляване  на 
проблема  от полепването  по стъкло , като се използва  един  от 
следните  методи : 
— определяне  на теглото  на изпитваното  вещество  и на 
хидролизните  продукти , получени  чрез сорбция  в съда  на 
провеждане  на изпитването ; 
— използване  на ултразвукова  вана ; 
— измиване  с разтворител  на цялата  стъклария  при всеки  
интервал  на взимане  на проби ; 
— използване  на формулирани  продукти ; 
— използване  на увеличено  количество  съразтворител  при доба­  
вянето  на изпитвано  вещество  в системата , ако се използва  
съразтворител , той трябва  да е такъв , който  не хидролизира  
изпитваното  вещество . 
За процеса  на инкубиране  на различни  разтвори  на изпитване  
обикновено  са необходими  шейкъри  с контролирана  
температура  на водната  баня  или инкубатори  с термостат . 
Необходимо  е стандартно  лабораторно  оборудване , особено , 
следното : 
— рН-метър ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1032
 
— аналитични  инструменти  като GC, HPLC и TLC, включ­  
ително  подходящи  системи  за откриване  за анализиране  на 
радиоактивно  маркирани  и немаркирани  вещества  или метод  
за обратно  изотопно  разреждане ; 
— инструменти  за целите  на определяне  (напр . MS, GC-MS, 
HPLC-MS, NMR и др.); 
— течен  сцинтилационен  брояч ; 
— разделителни  фунии  за екстракция  течност —течност ; 
— апарати  за концентриране  на разтвори  и екстракти  (напр . 
ротационен  изпарител ); 
— уред  за контролиране  на температурата  (напр . водна  баня ). 
Химичните  реагенти  включват  например : 
— органични  разтоворители , аналитично  чисти , напр . хексан , 
дихлорметан  и др.; 
— сцинтилационна  течност ; 
— буферни  разтвори  (за подробности  вж. точка  1.8.3).  
Цялата  стъклария  и отговарящите  на стандартите  за реагенти  
вода  и буферни  разтвори , които  ще се използват  в хидролизните  
опити , трябва  да бъдат  стерилизирани . 
1.8.2.  Прилагане  на изпитваното  вещество  
Изпитваното  вещество  се прилага  като воден  разтвор  към 
различни  буферни  разтвори  (вж. приложение  3). Ако е необ­  
ходимо , за подходящо  разтваряне  е разрешено  използването  на 
малки  количества  на добре  разтворими  във вода  разтворители  
(като ацетонитрил , ацетон , етилов  алкохол ) за прилагане  или 
разпределение  на изпитваното  вещество , но това обикновено  
не трябва  да надхвърля  1 % v/v. В случай  на предвидена  по- 
висока  концентрация  на разтворителите  (напр . в случая  на слабо  
разтворими  вещества  на изпитване ), това може  да се разреши  
единствено  когато  е възможно  да се покаже , че разтворителят  не 
оказва  ефект  върху  хидролизата  на изпитваните  вещества . 
Използването  на приготвени  по формула  продукти  не е 
препоръчвано  рутинно , тъй като не може  да се изключи , че 
съставките , участващи  във формулата  на приготвяне , могат  да 
повлияят  процеса  на хидролиза . Все пак, използването  на 
материал , приготвен  по формула  може  да е подходяща  
алтернатива  за лошо  разтворими  във вода  вещества  или за 
вещества , които  полепват  по стъкло  (виж точка  1.8.1).  
Трябва  да се използва  концентрация  на изпитваното  вещество , 
която  не превишава  0,01 М или половината  от концентрацията  
на насищане  (вж. приложение  1). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1033
 
1.8.3.  Буферни  разтвори  
Изпитването  на хидролиза  следва  да се провежда  при стойности  
на рН от 4, 7 и 9. За целта  буферният  разтвор  следва  да се 
приготви , като се използват  химически  вещества  и вода , 
отговарящи  на стандартите  реагенти . Някои  полезни  буферни  
системи  са представени  в приложение  3. Следва  да се 
отбележи , че използваната  буферна  система  може  да повлияе  
на степента  на хидролиза  и където  това се наблюдава , трябва  
да се използва  друга  буферна  система  ( 1 ). 
рН на всеки  буферен  разтвор  следва  да се провери  с калибриран  
рН-метър  с точност  до 0,1 при изискваната  температура . 
1.8.4.  Условия  на изпитване  
1.8.4.1.  Температура  на изпитване  
Опитите  за хидролиза  следва  да се провеждат  при постоянна  
температура . За целите  на екстраполиране  е важно  
температурата  да съответства  най-малко  до ± 0,5  o С. 
Ако хидролитичното  поведение  на изпитваното  веществото  е 
неизвестно , следва  да се проведе  предварително  изпитване  
(стъпало  1) при температура  50  o С. Кинетични  изпитвания  на 
по-високо  стъпало  следва  да се провеждат  при минимален  брой  
от три температури  (включително  изпитването  при 50 o С), освен  
ако изпитваното  вещество  е стабилно  на хидролиза , определено  
при изпитването  на стъпало  1. Предложения  температурен  
диапазон  е 10—70  o С (като за предпочитане  е да се използва  
поне  една  температура  под 25  o С), което  ще обхване  
температурата  от 25  o С, използвана  в доклада  от изпитването , 
и повечето  температури , срещани  на терена . 
1.8.4.2.  Светлина  и кислород  
Всички  хидролизни  изпитвания  следва  да се проведат , като се 
използва  подходящ  метод , за да се избегне  фотолиза . Следва  да 
се вземат  всички  подходящи  мерки , за да се избегне  кислорода  
(напр . барботиране  на хелий , азот или аргон  в продължение  на 5 
минути  преди  приготвянето  на разтвора ). 
1.8.4.3.  Продължение  на изпитването  
Предварителното  изпитване  следва  да се проведе  в продължение  
на 5 дни, а изпитванията  на по-високо  стъпало  следва  да се 
продължават , докато  изпитваното  вещество  се хидролизира  до 
90 % или в продължение  на 30 дни, в зависимост  от това кое 
събитие  ще настъпи  първо . 
1.8.5.  Провеждане  на изпитването  
1.8.5.1.  Предварително  изпитване  (стъпало  1) 
Предварителното  изпитване  се провежда  при 50 ± 0,5  o С и рН 
4,0, 7,0 и 9,0. Ако след  5 дни се наблюдава  хидролиза , по-малка  
от 10 процента  (t 0,5 25  o С > 1 година ), изпитваното  вещество  се 
счита  хидролитично  стабилно  и обикновено  не се изискват  
допълнителни  изпитвания . Ако за веществото  се знае, че е 
нестабилно  при температури , срещани  в околната  среда  ( 2 ) 3 , 
тогава  не се изисква  предварително  изпитване . Аналитичният  
метод  трябва  да е достатъчно  точен  и чувствителен , за да 
може  да открие  намаление  от 10 процента  на първоначалната  
концентрация . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1034  
( 1 ) Мабей  и Мил  препоръчват  използването  на боратен  или ацетатен  буфер  вместо  
фосфатен  (11). 
( 2 ) Такава  информация  може  да се получи  от други  източници  като данни  за 
хидролизата  на съединения  с подобен  строеж  от литературни  източници  или 
други  предварителни , полуколичествени  изпитвания  за хидролиза  на изпитваното  
вещество  на по-ранен  етап на развитие .
 1.8.5.2.  Хидролиза  на нестабилни  вещества  (стъпало  2) 
Изпитване  на по-високо  стъпало  (напреднало ) следва  да се 
проведе  при стойностите  на рН, при които  изпитваното  
вещество  се е показало  нестабилно , както  е определено  от 
предварителното  изпитване  по-горе. Температурата  на 
буферните  разтвори  на изпитваното  вещество  следва  да се 
поддържа  термостатно  на избраните  стойности . За да се 
провери  дали  реакцията  е от първи  порядък , всеки  разтвор  
следва  да се анализира  през интервали  време , които  образуват  
минимум  шест  раздалечени  точки , обикновено  между  10 % и 
90 % хидролизиране  на изпитваното  вещество . Следва  да се 
вземат  проби  за повторно  изпитване  (минимум  две еднакви  
проби , държани  в отделни  съдове  на реакция ) и съдържанието  
им да се анализира  при всеки  от поне  шестте  интервала  за 
взимане  на проби  (за получаване  на поне  дванадесет  точки  с 
данни  от повторно  изпитване ). Използването  на еднообемна  
проба , от която  да се взимат  отделните  аликвотни  части  от 
изпитваното  вещество  при всеки  интервал  на изпитване , се 
счита  за неподходящо , тъй като не позволява  анализ  на 
варирането  на данните  и може  да доведе  до проблеми  от 
замърсяване  на изпитваното  вещество . Изпитване  за 
потвърждаване  на стерилността  следва  да се проведат  на края  
на изпитването  от по-високо  стъпало  (т.е. при 90 % хидролиза  
или 30 дни). Все пак, ако не наблюдава  разпадане  (т.е. транс­  
формиране ), изпитването  за стерилност  не се счита  за необ­  
ходимо . 
1.8.5.3.  Определяне  на продуктите  от хидролизата  (стъпало  3) 
Всеки  основен  продукт  от хидролиза , поне  тези представляващи  
> 10 % от приложената  доза, следва  да бъде  определен  с 
подходящи  аналитични  методи . 
1.8.5.4.  Изпитвания  по избор  
Може  да са необходими  допълнителни  изпитвания  при 
стойности  на рН, различни  от 4, 7 и 9 за хидролитично  
неустойчиви  изпитвани  вещества . Например  за физиологични  
цели  може  да е необходимо  изпитване  при условия  с по- 
висока  киселинност  (напр . рН 1,2), като се използва  една  физио­  
логично  подходяща  температура  (37  o С). 
2. ДАННИ  
Ако е възможно , количествата  на изпитваното  вещество  и на 
продуктите  от хидролизата , следва  да се представят  като 
процент  от приложената  първоначална  концентрация  и когато  
е подходящо , като mg/L за всеки  интервал  на взимане  на 
проби  и за всяко  рН и температура  на изпитване . В допълнение , 
масовият  баланс  следва  да се представи  в проценти  от първон­  
ачално  приложената  концентрация , когато  е използвано  
маркирано  вещество  на изпитване . 
Следва  да се покаже  графично  представяне  на превърнатите  в 
логаритмична  форма  данни  за концентрациите  на изпитваното  
вещество  по посока  на времето . Всички  основни  хидролизни  
продукти  или поне  тези представляващи  ≥ 10 % от приложената  
доза следва  да се определят  и техните  логаритмични  конце­  
нтрации  да се нанесат  графично  по същия  начин  както  на 
главното  вещество , с цел да се покаже  тяхната  степен  на 
формиране  и намаляване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1035
 
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
По-точно  определяне  на времената  на полуразпад  или стой­  
ностите  на DT  50 следва  да се получи  чрез изчисляване  
подходящия  кинетичен  модел . Времето  на полуразпад  и/или 
стойностите  на DT  50 (включително  интервала  на доверие ) 
следва  да се докладват  за всяко  рН и температура , заедно  с 
описание  на използвания  модел , порядъка  на кинетиката  и коеф­  
ициента  на определяне  (r 2 ). Ако е подходящо , изчисленията  
следва  да се приложат  и към хидролизните  продукти . 
В случая  на изследвания  за скорост  на реакцията , проведени  при 
различни  температури , константите  за скорост  на хидролизата  от 
псевдо  първи  порядък  (k  obs ), следва  да бъдат  описани  като 
функция  от температурата . Изчисляването  следва  да е въз 
основа  както  на разделянето  на k obs на скоростни  константи  за 
киселинно  катализирани , неутрални  и основно  катализирани  
процеси  на хидролиза  (k  Н , к неутрален , и k ОН ), така и на 
уравнението  на Арениус : 
k obs ¼ k H ½H þ â þ k неутрал þ k OH ½OH Ä â ¼ Σ 
i ¼ H;неутрален ;OH A i e ÄB i=T 
където  A  i и B  i са константите  на регресия  в мястото  на 
пресичане  на координатната  ос и на наклона  съответно  на най- 
добре  съответстващите  линии , образувани  от линейно  
намаляващия  ln k  i за реципрочната  стойност  на абсолютната  
температура  по Келвин  (Т). Чрез  използването  на уравненията  
на Арениус  за киселинно , неутрални  и основно  катализирани  
процеси  на хидролиза  скоростните  константи  на реакции  от 
псевдо  първи  порядък , и по този начин  времената  на 
полуразпад , могат  да се изчислят  за други  температури , за 
които  прякото  опитно  определяне  на скоростна  константа  не е 
практически  осъществимо  (10).  
2.2 ОЦЕНКА  И ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Повечето  реакции  на хидролиза  следват  видимо  скорости  на 
реакции  от първи  порядък , поради  което  времената  на 
полуразпад  са независими  от концентрацията  (вж. уравнение  4 
в приложение  2). Това  обикновено  позволява  прилагането  на 
лабораторни  резултати , получени  в рамките  на 10  -2 до 10  -3 М, 
към природни  условия  (≤ 10  -6 М) (10). Няколко  примера  за 
добро  съвпадение  на скорости  на хидролиза , измерени  в чиста  
вода  и в природни  води  за различни  химични  вещества , са 
докладвани  от Мабей  и Мил  (11), при условие  правилно  са 
измерени  рН и температурата . 
3. ДОКЛАДВАНЕ  
3.1 ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  най-малко  
следната  информация : 
Изпитвано  вещество : 
— тривиално  наименование , химично  наименование , номер  по 
CAS, структурна  формула  (включително  място  на маркера , 
когато  се използва  радиоактивно  маркиран  материал ) и 
съответните  физико -химични  свойства  (вж. точка  1.5);  
— чистота  (примеси ) на изпитваното  вещество ; 
— чистота  на маркера  на маркираното  химично  вещество  и 
моларна  активност  (където  е необходимо ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1036
 
— Буферни  разтвори : 
— дати  и подробности  на приготвяне ; 
— използвани  буфери  и води ; 
— моларност  и рН на буферните  разтвори . 
Условия  на изпитване : 
— дати  на провеждане  на изследванията ; 
— количество  приложено  изпитвано  вещество ; 
— метод  и разтворители  (тип и количество ), използвани  за 
прилагането  на изпитваното  вещество ; 
— обем  на разтворите  на изпитваното  вещество  с буфер , 
подложени  на инкубиране ; 
— описание  на използваната  система  за инкубиране ; 
— рН и температура  по време  на изследването ; 
— времена  на взимане  на проби ; 
— метод (и) на екстракция ; 
— методи  на количествено  определяне  и идентифициране  на 
изпитваното  вещество  и хидролизните  му продукти  в 
буферните  разтвори ; 
— брой  повторни  изследвания . 
Резултати : 
— повторяемост  и чувствителност  на използваните  аналитични  
методи ; 
— аналитични  добиви  (процентните  стойности  за валидно  
проучване  са посочени  в точка  1.7.1);  
— данни  от повторните  изпитвания  и средни  стойности , 
показани  във вид на таблица ; 
— масов  баланс  по време  и в края  на изследванията  (когато  са 
използвани  маркирани  вещества  на изпитване ); 
— резултати  от предварителното  изпитване ; 
— обсъждане  и тълкуване  на резултатите ; 
— всички  изходни  данни  и цифри . 
Следната  информация  е необходима  само  ако се определя  
скоростта  на хидролиза : 
— графично  отбелязване  на концентрациите  по отношение  на 
времето  за веществата  на изпитване  и, където  е необходимо , 
за хидролизните  продукти  при всяка  стойност  на рН и 
температурата ; 
— таблици  с резултати  от уравнението  на Арениус  за 
температура  20  o С/25 o С с рН, скоростна  константа  [час -1 
или ден  -1 ], време  на полуразпад  или DT  50 , температура  
[ o С], включително  интервала  на доверие  и коефициетните  
на корелация  (r 2 ) или подобна  информация ; 
— предложен  път на хидролиза . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1037
 
4. ПРЕПРАТКИ  
1. ОИСР  (1981 г.). Хидролиза  като функция  от Ph. Насоки  на 
ОИСР  за изпитването  на химически  вещества  № 111, 
приети  на 12 май 1981 г. 
2. US-Environmental Protection Agency (1982). 40 CFR 
796.3500, Hydrolysis as a Function of pH at 25  o C. Pesticide 
Assessment Guidelines, Subdivision N. Chemistry: Environ ­
mental Fate.  
3. Agriculture Canada (1987). Environmental Chemistry and Fate 
Guidelines for registration of pesticides in Canada.  
4. Европейски  Съюз  (EC) (1995 г.). Директива  95/36/ЕО на 
Комисията  за изменение  на Директива  91/414/ ЕИО  на 
Съвета  относно  пускането  на пазара  на продукти  за раст­  
ителна  защита . Приложение  V: Съдба  и поведение  в 
околната  среда . 
5. Нидерландска  комисия  за регистрация  на пестициди  
(1991 г.). Кандидатстване  за регистриране  на пестицид . 
Раздел  G: Поведение  на продукта  и метаболитите  му в 
почва , вода  и въздух . 
6. BBA (1980). Merkblatt Nr. 55, Teil I und II: Prüfung des 
Verhaltens von Pflanzenbehandlungsmitteln im Wasser (октомври  1980 г.).
 
7. SETAC (1995). Procedures for Assessing the Environmental 
Fate and Ecotoxicity of Pesticides. Mark R. Lynch, Ed.  
8. ОИСР  (2000 г.). Guidance document on aquatic toxicity testing 
of difficult substances and mixtures, OECD Environmental 
Health and Safety Publications Series on Testing and Assessment Nr. 23.
 
9. ОИСР  (1993 г.). Насоки  за изпитването  на химични  
вещества , Париж , ОИСР  (1994—2000 г.): Допълнение  6-11 
към Насоки  за изпитването  на химични  вещества . 
10. Nelson, H, Laskowski D, Thermes S, and Hendley P. (1997) 
Recommended changes in pesticide fate study guidelines for 
improving input to computer models. (Text version of oral presentation at the 14
 th Annual Meeting of the Society of Envi ­
ronmental Toxicology and Chemistry, Dallas TX, November 
1993).  
11. Mabey, W. and Mill, T. (1978). Critical review of hydrolysis of 
organic compounds in water under environmental conditions. J. Phys. Chem. Ref. Data 7, 383-415.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1038
 
Приложение  1 
Схема  на изпитване  за стъпална  хидролиза
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1039
 
Приложение  2 
Дефиниции  и единици  
Следва  да се използват  единиците  от Международната  система  единици  (SI).  
Изпитвано  вещество : всяко  вещество , независимо  дали  е основното  
вещество  или съответните  продукти  на преобразуване . 
Продукти  на трансформация : всички  вещества , получени  в резултат  на 
биотична  или абиотична  реакции  на преобразуване  на изпитваното  
вещество . 
Хидролизни  продукти : всички  вещества , получени  в резултат  на хидрол­  
итично  преобразуване  на изпитваното  вещество . 
Хидролиза  се отнася  за реакция  на вещество  на изпитване  RX с вода  при 
чиста  замяна  на групата  X с ОН, съгласно  реакцията : 
RX + HOH → ROH +HX [1]  
Скоростта  с която  концентрацията  на RX намалява  в този опростен  процес  
се дава чрез: 
скорост  = k [H  2 O] [RX] реакция  от втори  порядък  
или 
скорост  = k [RX] реакция  от първи  порядък  
в зависимост  от стъпката  за определяне  на скоростта . Поради  присъствието  
на вода  в много  по-големи  количества , отколкото  изпитваното  вещество , 
този тип реакция  обикновено  се описва  като реакция  от псевдо  първи  
порядък , в която  наблюдаваната  скоростна  константа  е дадена  със 
следната  формула : 
k obs = k[H  2 O] [2]  
и може  да бъде  определена  от израза  (*) 
k obs ¼ 1 
t ln C o 
C t [3] 
където  
t = време  
и С о , C t = концентрации  на RX във време  0 и t. 
Единиците  на тази константа  имат  дименсия  от (време ) -1 и времето  на 
полуразпад  на реакцията  (времето  за което  50 % от RX ще реагира ) се 
дава с: 
t 0;5 ¼ ln2 
k obs [4] 
Време  на полуразпад : (t 0,5 ) е времето , за което  50 % от изпитваното  
вещество  е претърпяло  хидролиза , когато  реакцията  може  да се опише  
като кинетика  от първи  порядък ; то е независимо  от концентрацията . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1040  
(*) Ако нанасянето  на логаритмичните  данни  спрямо  времето  не показва  линейна  
функция  (равна  на реакция  от първи  порядък ), то използването  на уравнение  [3] 
не е подходящо  за определяне  на скоростната  константа  на хидролиза  на 
изпитваното  съединение .
 DT 50 (Време  на изчезване  50):  е времето , за което  концентрацията  на 
изпитваното  вещество  е намаляла  с 50 %; то е различно  от времето  на 
полуразпад  t 0,5 , когато  реакцията  не протича  при кинетика  от първи  
порядък . 
Оценка  на k при различна  температура  
Когато  скоростните  константи  са известни  за две температури , скоростните  
константи  при други  температури  могат  да се изчислят , като се използва  
уравнението  на Арениус : 
k ¼ A Ü e Ä E 
R Ü T или ln k ¼ ÄE 
R Ü T þ ln A 
Нанасянето  на In k спрямо  на 1/Т образува  права  линия  с наклон  -E/R  
където : 
k = скоростна  константа , измерена  при различни  температури  
Е = енергия  на активация  [kJ/mol]  
Т = абсолютна  температура  [К] 
R = газова  константа  [8,314 J/mol.K]  
Енергията  на активация  е изчислена  чрез регресивен  анализ  или чрез 
следното  уравнение : 
E ¼ R Ü ln k 2 Ä ln k 1 
1 
T 1 Ä 1 
T 2 Í Î  
където : T 2 > T  1 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1041
 
Приложение  3 
Буферни  системи  
A. CLARK и LUBS:  
Буферни  смеси  на CLARK и LUBS  (*) 
Състав  pH  
0,2 N HCl и 0,2 N KCl при 20  o C 
47,5 ml HCl + 25 ml KCl разреден  до 100 ml 1,0 
32,25 ml HCl + 25 ml KCl разреден  до 100 ml 1,2 
20,75 ml HCl + 25 ml KCl разреден  до 100 ml 1,4 
13,15 ml HCl + 25 ml KCl разреден  до 100 ml 1,6 
8,3 ml HCl + 25 ml KCl разреден  до 100 ml 1,8 
5,3 ml HCl + 25 ml KCl разреден  до 100 ml 2,0 
3,35 ml HCl + 25 ml KCl разреден  до 100 ml 2,2  
0,1 M калиев  бифталат  + 0,1 N HCl при 20  o C 
46,70 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 2,2 
39,60 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 2,4 
32,95 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 2,6 
26,42 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 2,8 
20,32 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 3,0 
14,70 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 3,2 
9,90 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 3,4 
5,97 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 3,6 
2,63 ml 0,1 N HCl + 50 ml бифталат  до 100 ml 3,8  
0,1 M калиев  бифталат  + 0,1 N NaOH при 20 o C 
0,40 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 4,0 
3,70 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 4,2 
7,50 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 4,4 
12,15 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 4,6 
17,70 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 4,8  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1042  
(*) Стойностите  на рН, докладвани  в таблиците , са изчислени  от измерване  на потенциала , като са 
използвани  стандартните  уравнения  на Sörensen (1909 г.). Съответните  стойности  на рН са с 0,04 
единици  по-високи , отколкото  табличните  стойности .
 Състав  pH  
23,85 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 5,0 
29,95 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 5,2 
35,45 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 5,4 
39,85 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 5,6 
43,00 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 5,8 
45,45 ml 0,1 N NaOH + 50 ml бифталат  до 100 ml 6,0  
Буферни  смеси  на CLARK и LUBS ( продължение ) 
0,1 М монокалиев  фосфат  + 0,1 N NaOH при 20  o С 
5,70 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 6,0 
8,60 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 6,2 
12,60 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 6,4 
17,80 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 6,6 
23,45 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 6,8 
29,63 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 7,0 
35,00 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 7,2 
39,50 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 7,4 
42,80 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 7,6 
45,20 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 7,8 
46,80 ml 0,1 N NaOH + 50 ml фосфат  до 100 ml 8,0  
0,1 M H  3 B0 3 в 0,1 M KCl + 0,1 N NaOH при 20  o C 
2,61 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 7,8 
3,97 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 8,0 
5,90 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 8,2 
8,50 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 8,4 
12,00 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 8,6 
16,30 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 8,8 
21,30 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 9,0 
26,70 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 9,2  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1043
 
32,00 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 9,4 
36,85 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 9,6 
40,80 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 9,8 
43,90 ml 0,1 N NaOH + 50 ml борна  киселина  до 100 ml 10,0  
Б. KOLTHOFF и VLEESCHHOUWER:  
Цитратни  буфери  на KOLTHOFF и VLEESCHHOUWER  (*) 
Състав  рН 
0,1 М монокалиев  нитрат  и 0,1 N НСl при 18 o С (*) 
49,7 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 2,2 
43,4 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 2,4 
36,8 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 2,6 
30,2 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 2,8 
23,6 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 3,0 
17,2 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 3,2 
10,7 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 3,4 
4,2 ml 0,1 N HCl + 50 ml нитрат  до 100 ml 3,6  
0,1 M монокалиев  цитрат  и 0,1 N NaOH при 18 o C (*) 
2,0 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 3,8 
9,0 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 4,0 
16,3 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 4,2 
23,7 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 4,4 
31,5 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 4,6 
39,2 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 4,8 
46,7 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 5,0 
54,2 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 5,2 
61,0 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 5,4 
68,0 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 5,6 
74,4 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 5,8 
81,2 ml 0,1 N NaOH + 50 ml цитрат  до 100 ml 6,0  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1044  
(*) Добавете  малки  кристали  тимол  или сходно  вещество , за да предотвратите  появата  
на мухъл .
 В. SÖRENSEN:  
Боратни  смеси  на SORENSEN  
Състав  Sörensen 
18 o C Walbum, pH при 
ml боракс  ml HCl/N аОН  10  o C 40  o C 70  o C 
0,05 М боракс  + 0,1 N HCl  
5,25 4,75 7,62 7,64 7,55 7,47 
5,50 4,50 7,94 7,98 7,86 7,76 
5,75 4,25 8,14 8,17 8,06 7,95 6,00 4,00 8,29 8,32 8,19 8,08 6,50 3,50 8,51 8,54 8,40 8,28 7,00 3,00 8,08 8,72 8,56 8,40 7,50 2,50 8,80 8,84 8,67 8,50 8,00 2,00 8,91 8,96 8,77 8,59 8,50 1,50 9,01 9,06 8,86 8,67 9,00 1,00 9,09 9,14 8,94 8,74 
9,50 0,50 9,17 9,22 9,01 8,80 
10,0 0,00 9,24 9,30 9,08 8,86  
0,05 М боракс  + 0,1 N NaOH  
10,0 0,0 9,24 9,30 9,08 8,86 
9,0 1,0 9,36 9,42 9,18 8,94 8,0 2,0 9,50 9,57 9,30 9,02 7,0 3,0 9,68 9,76 9,44 9,12 6,0 4,0 9,97 10,06 9,67 9,28
 
Фосфатни  смеси  на SÖRENSEN  
Състав  рН 
0,0667 М монокалиев  фосфат  + 0,0667 М двунатриев  фосфат  при 20  o С 
99,2 ml KH  2 PO 4 + 0,8 ml Na  2 HPO  4 5,0 
98,4 ml KH  2 PO 4 + 1,6 ml Na  2 HPO  4 5,2 
97,3 ml KH  2 PO 4 + 2,7 ml Na  2 HPO  4 5,4 
95,5 ml KH  2 PO 4 + 4,5 ml Na  2 HPO  4 5,6 
92,8 ml KH  2 PO 4 + 7,2 ml Na  2 HPO  4 5,8 
88,9 ml KH  2 PO 4 + 11,1 ml Na  2 HPO  4 6,0 
83,0 ml KH  2 PO 4 + 17,0 ml Na  2 HPO  4 6,2 
75,4 ml KH  2 PO 4 + 24,6 ml Na  2 HPO  4 6,4 
65,3 ml KH  2 PO 4 + 34,7 ml Na  2 HPO  4 6,6 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1045
 
53,4 ml KH  2 PO 4 + 46,6 ml Na  2 HPO  4 6,8 
41,3 ml KH  2 PO 4 + 58,7 ml Na  2 HPO  4 7,0 
29,6 ml KH  2 PO 4 + 70,4 ml Na  2 HPO  4 7,2 
19,7 ml KH  2 PO 4 + 80,3 ml Na  2 HPO  4 7,4 
12,8 ml KH  2 PO 4 + 87,2 ml Na  2 HPO  4 7,6 
7,4 ml KH  2 PO 4 + 92,6 ml Na  2 HPO  4 7,8 
3,7 ml KH  2 PO 4 + 96,3 ml Na  2 HPO  4 8,0 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1046
 
В.8. ТОКСИЧНОСТ  ЗА ЗЕМНИ  ЧЕРВЕИ . 
ИЗПИТВАНЕ  С ИЗКУСТВЕНА  ПОЧВА  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
При това лабораторно  изпитване  изпитваното  вещество  се 
добавя  към изкуствена  почва , в която  за 14 дни се поставят  
земни  червеи . След  този период  (и, по желание , след  7 дни) 
се изпитва  леталният  ефект  на веществото  върху  земните  
червеи . Изпитването  осигурява  метод  за относително  крат­  
котрайно  пресяващо  изпитване  за ефекта  на химическите  
вещества  върху  земните  червеи , чрез постъпване  по кожен  и 
стомашно -чревен  път. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ  И ЕДИНИЦА  
LC 50 : Концентрацията  на дадено  вещество , за която  е преценено , 
че убива  50 % от експерименталните  животни  през периода  на 
изпитването . 
1.3. ВЕЩЕСТВО  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Периодично  се използва  вещество  за сравнение  се използва  
периодично  за да се демонстрира , че чувствителността  на 
експерименталната  система  не е значително  променена . 
Като  вещество  за сравнение  се препоръчва  хлороацетамид  „чист  
за анализ “. 
1.4. ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Почвата  е непостоянна  среда , така че за това изпитване  се 
използва  точно  определена  изкуствена  глинеста  почва . 
Възрастните  земни  червеи  от вида  Eisenia foetida  (вижте  
забележката  в приложението ) се държат  в определена  изкуствена  
почва , третирана  с различни  концентрации  на изпитваното  
вещество . Съдържанието  на контейнерите  се разстила  на табла  
14 дни (и, по желание , 7 дни) след  началото  на изпитването  и се 
преброяват  преживелите  при всяка  концентрация  земни  червеи . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Изпитването  е проектирано  така, че да бъде  възможно  най-добре  
възпроизводимо  по отношение  на изпитвания  субстрат  и орга­  
низъм . В края  на изпитването  смъртността  при контролите  не 
трябва  да превишава  10 %, в противен  случай  изпитването  е 
невалидно . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Материали  
1.6.1.1. Е к с п е р и м е н т а л е н с у б с т р а т 
Като  основен  експериментален  субстрат  се използва  определена  
изкуствена  почва . 
а) Основен  субстрат  (процентите  са по отношение  на сухото  
тегло ) 
— 10 % торфен  мъх (с рН възможно  най-близо  до 5,5—6,0 
без видими  остатъци  от растения  и фино  смлян ), ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1047
 
— 20 % каолин , за предпочитане  с повече  от 50 % каолинит , 
— около  69 % промишлен  кварцов  пясък  (преобладава  
финият  пясък  с над 50 % частици  с размер  0,05 до 
0,2 mm). Ако веществото  не се диспергира  достатъчно  
във вода , трябва  да се подържат  по 10 g за експериме­  
нтален  контейнер  за по-късно  смесване  с изпитваното  
вещество . 
— около  1 % калциев  карбонат  (СаСО  3 ), пулверизиран , 
химически  чист , добавен  за постигане  на рН 6,0 + 0,5.  
б) Експериментален  субстрат  
Експерименталният  субстрат  съдържа  основния  субстрат , 
изпитваното  вещество  и дейонизирана  вода . 
Водното  съдържание  е около  25 до 42 % от сухото  тегло  на 
основния  субстрат . Водното  съдържание  на субстрата  се 
определя  чрез изсушаване  на проба  до постоянно  тегло  до 
около  25 до 42 % от сухото  тегло  на основния  субстрат  при 
105  o С. Най-важният  критерий  е, че изкуствената  почва  
трябва  да бъде  навлажнена  до степен , при която  няма  
остатъчна  вода . Трябва  да се внимава  при смесването  да се 
получи  равномерно  разпределяне  на изпитваното  вещество  и 
на субстрата . Трябва  да се отбележи  начинът  на въвеждане  на 
изпитваното  вещество  в субстрата . 
в) Контролен  субстрат  
Контролният  субстрат  съдържа  основния  субстрат  и вода . 
Ако се използва  добавка , една  допълнителна  контрола  
трябва  да съдържа  същото  количество  от добавката . 
1.6.1.2. Е к с п е р и м е н т а л н и к о н т е й н е р и 
Стъклени  контейнери  с обем  около  един  литър  (адекватно  
затворени  с пластмасови  капаци , панички  или пластмасов  
филм  с вентилационни  отвори ), напълнени  с определено  
количество  влажен  експериментален  или контролен  субстрат , 
еквивалентен  на 500 g сухо  тегло  на субстрата . 
1.6.2.  Условия  на изпитване  
Контейнерите  трябва  да се държат  в климатични  камери  при 
температура  20 ± 2  o С с непрекъснато  осветяване . Интензив­  
ността  на светлината  трябва  да бъде  400 до 800 лукса . 
Изпитването  трае 14 дни, но, по желание , смъртността  може  да 
бъде  отчетена  седем  дни след  началото  на изпитването . 
1.6.3.  Експериментална  процедура  
Е к с п е р и м е н т а л н и к о н ц е н т р а ц и и 
Концентрациите  на изпитваното  вещество  се изразяват  като 
тегло  на веществото  за единица  сухо  тегло  на основния  
субстрат  (mg/kg).  
И з п и т в а н е з а о п р е д е л я н е н а д и а п а з о н 
Диапазонът  на концентрациите , които  предизвикват  смъртност  в 
0 до 100 % може  да бъде  определен  с помощта  на изпитване  за 
определяне  на диапазон , което  да даде  информация  за диапазона  
на концентрациите , които  да се използват  в дефинитивното  
изпитване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1048
 
Веществото  трябва  да бъде  изпитвано  при следните  конце­  
нтрации : 1 000; 100; 10; 1; 0,1 mg вещество /килограм  експериме­  
нтален  субстрат  (сухо  тегло ). 
Когато  трябва  да се проведе  пълно  дефинитивно  изпитване , за 
изпитването  за определяне  на диапазон  може  да са достатъчни  
по една  експериментална  партида  за концентрация  и по една  за 
нетретираната  контрола , всяка  с по 10 червея . 
Д е ф и н и т и в н о и з п и т в а н е 
Резултатите  от изпитването  за определяне  на диапазон  се 
използват  за избиране  на поне  пет концентрации  в геометрична  
серия , които  покриват  диапазона  от 0 до 100 % смъртност  и 
които  се различават  с постоянен  фактор , непревишаващ  1,8.  
Изпитванията , при които  се използват  тези серии  от конце­  
нтрации , трябва  да дават  възможно  най-точна  оценка  на стой­  
ността  LC  50 и нейните  граници  на доверителност . 
При дефинитивното  изпитване  се използват  най-малко  по 
четири  експериментални  партиди  за концентрация  и четири  
нетретирани  контроли , всяка  с по 10 червея . Резултатите  от 
тези повторения  се представят  като средна  стойност  и 
стандартно  отклонение . 
Когато  две последователни  концентрации  в съотношение  1,8 
дават  само  0 % и 100 % смъртност , тези две стойности  са дост­  
атъчни , за да покажат  диапазона , в рамките  на който  попада  
LC 50 . 
С м е с о т о с н о в н и я е к с п е р и м е н т а л е н с у б с т р а т и 
и з п и т в а н о т о в е щ е с т в о 
Винаги  когато  е възможно , експерименталният  субстрат  трябва  
да бъде  приготвен  без никакви  допълнителни  средства , освен  
вода . Непосредствено  преди  началото  на изпитването  
изпитваното  вещество  се емулгира  или диспергира  в 
дейонизирана  вода  или друг  разтворител  и се смесва  с 
основния  експериментален  субстрат  или се разпръсква  
равномерно  върху  него  с фин хроматографски  или друг  
подобен  спрей . 
Ако е неразтворимо  във вода , изпитваното  вещество  може  да 
бъде  разтворено  във възможно  най-малък  обем  подходящ  
органичен  разтворител  (например  хексан , ацетон  или 
хлороформ ). 
За разтваряне , диспергиране  или емулгиране  на изпитваното  
вещество  могат  да се използват  само  средства , които  лесно  се 
изпаряват . Преди  употреба  експерименталният  субстрат  трябва  
да бъде  вентилиран . Количеството  изпарена  вода  трябва  да бъде  
възстановено . Контролата  трябва  да съдържа  същото  количество  
от всяка  добавка . 
Ако изпитваното  вещество  е неразтворимо  и не може  да се 
диспергира  или емулгира  в органични  разтворители , 10 g смес  
от фино  смлян  кварцов  пясък  и определено  количество  
изпитвано  вещество , което  е необходимо  за третиране  на 
500 g сухо  тегло  от изкуствената  почва , се смесват  с 490 g 
сухо  тегло  от експерименталния  субстрат . 
За всяка  експериментална  партида  във всеки  стъклен  контейнер  
се поставя  определено  количество  влажен  експериментален  
субстрат , еквивалентен  на 500 g сухо  тегло , заедно  с 10 земни  
червея , които  са аклиматизирани  за 24 часа с сходен  влажен  
основен  субстрат  и после  са измити  бързо , като излишната  
вода  е абсорбирана  с филтърна  хартия  преди  използването  им, 
и след  това са поставени  на повърхността  на експерименталния  
субстрат . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1049
 
Контейнерите  се покриват  с перфорирани  пластмасови  капаци , 
панички  или филм , за да се предотврати  изсъхването  на 
субстрата , и се държат  при експериментални  условия  в продъ­  
лжение  на 14 дни. 
Отчитането  трябва  да се направи  14 дни (и, по желание , седем  
дни) след  започване  на изпитването . Субстратът  се разстила  
върху  плочка , направена  от стъкло  или неръждаема  стомана . 
Земните  червеи  се изследват  и се определя  броят  на 
преживелите  червеи . Земните  червеи  се смятат  за мъртви , ако 
не реагират  на лек механичен  стимул  в предния  край . 
Когато  на седмия  ден се прави  изследване , контейнерът  отново  
се напълва  със субстрат  и преживелите  червеи  отново  се 
поставят  върху  повърхността  на същия  експериментален  
субстрат . 
1.6.4.  Експериментални  организми  
Експерименталните  организми  трябва  да бъдат  възрастни  
индивиди  от вида  Eiseniafoetida  (виж забележката  в 
допълнението ) (на възраст  поне  два месеца  с „поясче “) с 
влажно  тегло  300 до 600 mg. ( За метода  на отглеждане  виж 
допълнението ). 
2. ДАННИ  
2.1. ТРЕТИРАНЕ  И ОЦЕНКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Концентрациите  на изпитваното  вещество  се отчитат  чрез 
препратка  към съответните  проценти  на умрели  земни  червеи . 
Когато  данните  са адекватни , стойността  LC  50 и границите  на 
доверителност  (р = 0,05) трябва  да се определят  с помощта  на 
стандартни  методи  (Litchfield и Wilcoxon, 1949, за еквивалентен  
метод ). Стойността  LC  50 трябва  да бъде  представена  като mg 
изпитвано  вещество  за килограм  от експерименталния  субстрат  
(сухо  тегло ). 
Когато  наклонът  на кривата  на концентрацията  е прекалено  
стръмен , за да позволи  изчисляване  на LC50, достатъчна  е 
графична  оценка  на тази стойност . 
Когато  две последователни  концентрации  в съотношение  1,8 
дават  само  0 % и 100 % смъртност , тези две стойности  са дост­  
атъчни , за да покажат  диапазона , в рамките  на който  попада  
LC 50. 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следното : 
— твърдение , че изпитването  е проведено  в съответствие  с 
критериите  за качество , посочени  по-горе, 
— проведеното  изпитване  (изпитване  за определяне  на диапазон  
и/или дефинитивно  изпитване ), 
— точно  описание  на експерименталните  условия  или 
твърдение , че изпитването  е проведено  в съответствие  с 
метода , като всички  отклонения  трябва  да бъдат  съобщени , 
— точно  описание  на начина , по който  изпитваното  вещество  е 
смесено  в основния  експериментален  субстрат , 
— информация  за експерименталните  организми  (вид, възраст , 
средна  стойност  и диапазон  на теглото , условия  на 
отглеждане  и размножаване , доставчик ), ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1050
 
— метод , използван  за определяне  на LC  50 , 
— резултати  от изпитването , включително  всички  използвани  
данни , 
— описание  на наблюдаваните  симптоми  или на измененията  в 
поведението  на експерименталните  организми , 
— смъртност  при контролите , 
— LC  50 или най-високата  изпитвана  концентрация  без 
смъртност  и най-ниската  изпитвана  концентрация  със 
смъртност  100 %, 14 дни (и, по желание , седем  дни) след  
началото  на изпитването , 
— построяване  на кривата  концентрация /отговор , 
— резултати , получени  с веществото  за сравнение , независимо  
дали  във връзка  с настоящото  изпитване  или от предишни  
задачи  за контрол  на качеството . 
4. ПРЕПРАТКИ  
1. ОИСР , Париж , 1981, Test Guideline  207,  Решение  на Съвета  
C(81) 30 final.  
2. Edwards, C. A. and Lofty, J, R., 1977, Biology of Earthworms, 
Chapman and Hall, London, 331 pp.  
3. Bouche, M. B., 1972, Lombriciens de France, Ecologie et Syste ­
matique, Institut National de la Recherche Agronomique, 671 pp.  
4. Litchfield, J. T. and Wilcoxon, F., A simplified method of 
evaluation dose effect experiments. J. Pharm. Exp. Therap., vol. 96, 1949, p. 99.
 
5. Комисия  на Европейските  общности , Development of a stan ­
dardized laboratory method for assessing the toxicity of chemical 
substances to earthworms, Report EUR 8714 EN, 1983.  
6. Umweltbundesamt/Biologische Bundesanstalt für Land- und 
Forstwirtschaft, Berlin, 1984, Verfahrensvorschlag „Toxizitatstest am Regenwurm  Eisenia foetida  in kiinstlichem Boden“, in: 
Rudolph/Boje, Ökotoxikologie, ecomed, Landsberg, 1986.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1051
 
Допълнение  
Размножаване  и отглеждане  на червеите  преди  изпитването  
За размножаване  на животните , 30 до 50 възрастни  червея  се поставят  в 
кутия  за размножаване  с пресен  субстрат  и се изваждат  след  14 дни. Тези  
животни  могат  да се използват  за получаване  на допълнителни  партиди  за 
размножаване . Излюпените  от какавидите  земни  червеи  се използват  за 
изпитване , когато  съзреят  (след  два до три месеца  при предписаните  
условия ). 
Условия  на отглеждане  и размножаване  
Климатична  камера : температура  20 + 2  o С, за предпочитане  с 
непрекъснато  осветяване  (интензивност  на 
светлината  400 до 800 лукса ). 
Кутии  за размножаване : подходящи  плитки  контейнери  с обем  10 до 20 l.  
Субстрат : Eisenia foetida  може  да се отглежда  в 
екскрементите  на различни  животни . Като  
среда  за отглеждане  се препоръчва  да се 
използва  смес  в обем  от 50 % торф  и 50 % 
кравешка  или конска  тор. Средата  трябва  да 
има стойност  на рН около  6 до 7 (регулирана  
с калциев  карбонат ) и ниска  йонна  
проводимост  (под 6 mmol или 0,5 % конце­  
нтрация  на сол). 
Субстратът  трябва  да бъде  влажен , но не 
прекалено  мокър . 
Освен  посочения  по-горе метод , могат  
успешно  да се използват  и други  процедури . 
Забележка : Съществуват  две разновидности  Eisenia foetida,  които  някои  
таксономи  разделят  като видове  (Bouche, 1972). Те са морфологично  
сходни , но единият , Eisenia foetida foetida,  обичайно  има напречни  черти  
или ленти  върху  сегментите , а при другия , Eisenia foetida andrei,  това 
липсва , освен  това той има пъстър  червеникав  цвят . Когато  е възможно , 
трябва  да се използва  Eisenia foetida andrei.  Ако съществува  необходимата  
методика , могат  да се използват  други  видове . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1052
 
В.9. БИОЛОГИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ  
ИЗПИТВАНЕ  ПО ZAHN — WELLENS  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на метода  е да оцени  потенциалната  крайна  биологична  
разградимост  на неразтворими  във вода  нелетливи  органични  
вещества , когато  са подложени  на експозиция  на относително  
високи  концентрации  на микроорганизми  в условията  на 
статично  изпитване . 
Възможно  е да настъпи  физико -химична  адсорбция  на 
суспендираните  твърди  вещества  и това трябва  да се вземе  
предвид  при интерпретиране  на резултатите  (вижте  3.2).  
Изпитваните  вещества  се използват  в концентрации , съответ­  
стващи  на стойностите  на РОВ  в диапазона  50 до 400 mg/l 
или стойностите  на ХПК  в диапазона  100 до 1 000 mg/l ( РОВ  
= разтворен  органичен  въглерод ; ХПК  = химична  потребност  от 
кислород ). Предимството  на тези относително  високи  конце­  
нтрации  е аналитичната  сигурност . Съединенията  с токсични  
свойства  могат  да забавят  или да потиснат  процеса  на 
разграждане . 
При този метод  измерването  на концентрацията  на разтворения  
органичен  въглерод  или на химичната  потребност  от кислород  
се използва  за определяне  на крайната  биологична  разградимост  
на изпитваното  вещество . 
Едновременното  използване  на специфичен  аналитичен  метод  
може  да даде  възможност  за определяне  на първичното  
биологично  разграждане  на веществото  (изчезване  на родит­  
елската  химична  структура ). 
Методът  е приложим  само  за тези изпитвани  органични  
вещества , които , при използваната  за изпитването  концентрация : 
— са разтворими  във вода  при експерименталните  условия , 
— имат  пренебрежимо  ниско  парно  налягане  при експеримент­  
алните  условия , 
— не потискат  развитието  на бактериите , 
— се адсорбират  в ограничена  степен  в рамките  на експериме­  
нталната  система , 
— не се губят  при образуване  на пяна  в експерименталния  
разтвор , 
Информацията  за относителните  пропорции  на основните  
компоненти  на изпитвания  материал  ще бъдат  полезни  за 
интерпретиране  на получените  резултати , по-конкретно  в 
случаите , когато  резултатите  са ниски  или гранични . 
За интерпретиране  на ниските  резултати  и за избор  на 
подходящи  експериментални  концентрации  е желателно  да има 
информация  за токсичността  на веществото  за микроорга­  
низмите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1053
 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И ЕДИНИЦИ  
Величината  на разграждането , постигната  в края  на изпитването , 
се отчита  като „Биологично  разграждане  при изпитване  по 
Zahn — Wellens“:  
D T ð%Þ ¼ 1 Ä ðC T Ä C B Þ 
ðC A Ä C BA Þ # 
Ü 100 " 
където : 
D T = биологично  разграждане  ( %) във времето  Т, 
С A = стойности  на РОВ  (или на ХПК ) в експерименталната  
смес , измерени  три часа след  началото  на изпитването  
(mg/l) (РОВ  = разтворен  органичен  въглерод , ХПК  = 
химична  потребност  от кислород ), 
С T = стойности  на РОВ  (или на ХПК ) в експерименталната  
смес  по време  на вземането  на проби  (mg/l),  
С B = стойности  на РОВ  (или на ХПК ) в празната  проба  по 
време  на вземането  на проби  (mg/l),  
С BA = стойности  на РОВ  или ХПК  в празната  проба , 
измерени  три часа след  началото  на изпитването  
(mg/l).  
Степента  на разграждане  се закръглява  до най-близкия  цял 
процент . 
Процентното  разграждане  се представя  като процент  от 
отнемането  на РОВ  (или на ХПК )от изпитваното  вещество . 
Разликата  между  измерената  стойност  след  три часа и изчис­  
лената  или, за предпочитане , измерената  първоначална  
стойност , може  да даде  полезна  информация  за елиминирането  
на веществото  (вижте  3.2. Интерпретиране  на резултатите ). 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
В някои  случаи  при изпитване  на нови  вещества , може  да са 
полезни  вещества  за сравнение . Все още, обаче , не могат  да 
бъдат  препоръчани  конкретни  вещества  за сравнение . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
В стъклен  съд с обем  от един  до четири  литра  с бъркачка  и 
аератор  се поставят  заедно  активирана  утайка , минерални  
хранителни  вещества  и изпитваният  материал  като единствен  
източник  на въглерод  във воден  разтвор . Сместа  се разбърква  
и аерира  при температура  20 до 25 o С и дифузно  осветление  или 
в тъмна  стая за период  до 28 дни. Процесът  на разграждане  се 
мониторира  за определяне  стойностите  на РОВ  (или на ХПК ) 
във филтриран  разтвор  ежедневно  или през други  подходящи  
равни  интервали  от време . Съотношението  на елиминирания  
РОВ  (или ХПК ) след  всеки  интервал  и стойността , получена  
три часа след  началото , се изразява  като процент  на биологично  
разграждане  и служи  като мярка  за степента  на разграждане  в 
този момент . Построява  се крива  на биологичното  разграждане  
като резултатът  се нанася  на графика  срещу  времето . 
Когато  се използва  специфичен  аналитичен  метод , могат  да се 
измерят  промените  в концентрацията  на родителската  молекула  
поради  биологично  разграждане  (първична  биологична  
разградимост ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1054
 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
С помощта  на кръгово  изпитване  е доказано , че възпроизвод­  
имостта  на този метод  е задоволителна . 
Чувствителността  на метода  в голяма  степен  се определя  от 
вариабилността  на празната  проба  и, в по-малка  степен , от 
точността  на определянето  на разтворения  органичен  въглерод  
и от нивото  на изпитваното  съединение  в течността . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА ЕКСПЕРИМЕНТАЛНАТА  ПРОЦЕДУРА  
1.6.1.  Подготовка  
1.6.1.1. Р е а к т и в и 
Експериментална  вода : питейна  вода  със съдържание  на 
органичен  въглерод  < 5 mg/l. Общата  концентрация  на 
калциевите  и магнезиевите  йони  не трябва  да надвишава  
2,7 mmol/l, в противен  случай  е необходимо  адекватно  
разреждане  с дейонизирана  или дестилирана  вода . 
Сярна  киселина , аналитичен  реактив : 50 g/l. 
Разтвор  на натриев  хидроксид , аналитичен  реактив : 40 g/l. 
Разтвор  на минерални  хранителни  вещества : разт­  
ворете  в един  литър  дейонизирана  вода : 
амониев  хлорид , NH  4 Cl, аналитичен  реактив : 38,5 g, 
натриев  дихидрогенфосфат , NaH  2 PO4.2H  2 O, анал­  
итичен  реактив : 33,4 g, 
калиев  дихидрогенфосфат , КН2РО4, аналитичен  
реактив : 8,5 g, 
ди-калиев  монохидрогенфосфат , К2НРО 4, анал­  
итичен  реактив : 21,75 g.  
Сместа  служи  както  като хранително  вещество , така и като 
буферна  система . 
1.6.1.2. А п а р а т у р а 
Стъклени  съдове  с обем  един  до четири  литра  (например  
цилиндрични  съдове ). 
Бъркачка  със стъклена  или метална  бъркалка , монтирана  на 
подходящ  вал (бъркалката  трябва  да се върти  приблизително  5 
до 10 cm над дъното  на съда ). Вместо  това може  да се използва  
магнитна  бъркалка  с прът , дълъг  7 до 10 cm.  
Стъклена  тръбичка  с вътрешен  диаметър  2 до 4 mm за вкарване  
на въздух . Отворът  на тръбичката  трябва  да се намира  на около  
1 cm над дъното  на съда . 
Центрофуга  (около  3 550 g).  
Уред  за измерване  на рН. 
Уред  за измерване  на разтворения  кислород . 
Хартиени  филтри  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1055
 
Апарат  за мембранно  филтриране . 
Мембранни  филтри , размер  на порите  0,45 μm. Мембранните  
филтри  са подходящи , ако е сигурно , че те нито  освобождават  
въглерод , нито  абсорбират  веществото  по време  на 
филтрирането . 
Аналитично  оборудване  за определяне  съдържанието  на 
органичен  въглерод  и химичната  потребност  от кислород . 
1.6.1.3. П р и г о т в я н е н а п р о б а з а и н о к у л и р а н е 
Активирана  утайка  от станция  за биологично  пречистване  се 
промива  с експериментална  вода  чрез (многократно ) центроф­  
угиране  или утаяване  (горе). 
Активираната  утайка  трябва  да бъде  в подходящо  състояние . 
Такава  утайка  може  да се получи  от правилно  функционираща  
пречиствателна  станция  за отпадъчни  води . За да се получат  
колкото  е възможно  повече  различни  видове  или щамове  
бактерии , може  да се предпочете  да се смесят  проби  за инок­  
улиране  от различни  източници  (например  различни  пречиств­  
ателни  станции , почвени  екстракти , речни  води  и др.). Сместа  
трябва  да се третира , както  е описано  по-горе. 
За проверка  на активността  на активираната  утайка , вижте  
„Контрол  на функционирането “ по-долу . 
1.6.1.4. П р и г о т в я н е н а е к с п е р и м е н т а л н и р а з т в о р и 
Към експерименталния  съд добавете  500 ml експериментална  
вода , 2,5 ml/l разтвор  на минерални  хранителни  вещества  и 
активирана  утайка  в количество , което  съответства  на 0,2 до 
1,0 g/l сухо  вещество  в крайната  смес . Добавете  достатъчно  
изходен  разтвор  на изпитваното  вещество , така че в крайната  
смес  да се получи  концентрация  на РОВ  50 до 400 mg/l. Съотв­  
етните  стойности  на химичната  потребност  от кислород  са 100 
до 1 000 mg/l. Добавете  експериментална  вода , за да получите  
общ обем  един  до четири  литра . Избраният  общ обем  зависи  от 
броя  на пробите , които  трябва  да се вземат  за всяко  определяне  
на РОВ  и ХПК , и от обемите , които  са необходими  за аналит­  
ичната  процедура . 
Обикновено  обем  от два литра  се смята  за задоволителен . 
Приготвя  се и поне  един  контролен  съд (празна  проба ), който  
се наблюдава  паралелно  с всяка  експериментална  серия . Той 
съдържа  само  активирана  утайка  и разтвор  на минерални  
хранителни  вещества , приготвен  с експериментална  вода  до 
същия  общ обем , както  в експерименталните  съдове . 
1.6.2.  Провеждане  на изпитването  
Експерименталните  съдове  се разбъркват  с магнитни  бъркачки  
или винтови  пропелери  при дифузно  осветление  или в тъмна  
стая при температура  20 до 25  o С. Аерирането  се постига  с 
помощта  на сгъстен  въздух , пречистен  с филтър  от памучна  
вата и, ако е необходимо , бутилка  за отмиване . Утайката  не 
трябва  да се утаява  и кислородната  концентрация  не трябва  да 
спада  под 2 mg/l.  
Стойността  на рН трябва  да се проверява  на редовни  интервали  
(например  ежедневно ) и ако е необходимо , да се коригира  на 
рН 7 до 8. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1056
 
Загубите  от изпаряване  се компенсират  непосредствено  преди  
всяко  вземане  на проба  с дейонизирана  или дестилирана  вода  
в необходимите  количества . Полезно  е да се отбележи  нивото  на 
течността  върху  съда  преди  започване  на изпитването . След  
всяко  вземане  на проби  нивото  се отбелязва  отново  (без 
аериране  и разбъркване ). Първите  проби  се вземат  винаги  три 
часа след  започване  на изпитването , за да се открие  
адеорбирането  на изпитвания  материал  от активираната  утайка . 
Елиминирането  на изпитвания  материал  се последва  от 
определяне  на РОВ  и ХПК , което  се извършва  ежедневно  или 
на други  редовни  интервали . Пробите  от експерименталния  съд 
и празната  проба  се филтрират  през внимателно  промит  хартиен  
филтър . Първите  5 ml от филтрата  на експерименталния  разтвор  
се изхвърлят . Трудните  за филтриране  утайки  могат  да бъдат  
отстранени  предварително  чрез центрофугиране  в продължение  
на 10 минути . Измерването  на РОВ  и ХПК  се повтаря  най-малко  
два пъти . Изпитването  продължава  до 28 дни. 
Забележка : Пробите , които  остават  мътни , се филтрират  през 
мембранни  филтри . Мембранните  филтри  не трябва  да осво­  
бождават  или да адеорбират  никакъв  органичен  материал . 
К о н т р о л н а ф у н к ц и о н и р а н е т о н а а к т и в и р а н а т а 
у т а й к а 
Паралелно  с всяка  експериментална  серия  трябва  да се 
наблюдава  съд, съдържащ  познато  вещество , за да се провери  
функционалния  капацитет  на активираната  утайка . За тази цел е 
полезен  диетиленгликолът . 
А д а п т и р а н е 
Ако анализите  се провеждат  на относително  кратки  интервали  
(например  ежедневно ), адаптирането  може  да бъде  лесно  разп­  
ознато  по кривата  на разграждане  (вижте  фигура  2). Следов­  
ателно  изпитването  не трябва  да започва  непосредствено  преди  
края  на седмицата . 
Ако адаптирането  възникне  в края  на изпитването , изпитването  
може  да бъде  удължено  до завършване  на разграждането . 
Забележка : Ако е необходимо  по-широко  познаване  на 
поведението  на адаптираната  утайка , същата  активирана  утайка  
се подлага  още един  път на експозиция  на същия  изпитван  
материал  в съответствие  със следната  процедура : 
Изключете  бъркачката  и аератора  и оставете  активираната  
утайка  да се утаи . Изтеглете  над стояща  течност , допълнете  до 
два литра  с експериментална  вода , разбъркайте  за 15 минути  и 
оставете  да се утаи  отново . След  като отново  се изтегли  
надстояща  течност , използвайте  оставащата  утайка , за да 
повторите  изпитването  със същия  материал  в съответствие  с 
1.6.1.4 и 1.6.2 по-горе. Активираната  утайка  може  да бъде  
изолирана  и чрез центрофугиране  вместо  утаяване . 
Адаптираната  утайка  може  да бъде  смесена  с прясна  утайка  до 
концентрация  0,2 до 1 g/l сухо  тегло . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1057
 
А н а л и т и ч н и с р е д с т в а 
Нормално  пробите  се филтрират  през внимателно  измит  хартиен  
филтър  (за измиване  използвайте  дейонизирана  вода ). 
Пробите , които  остават  мътни , се филтрират  през мембранни  
филтри  (0,45 μm). 
Определянето  на концентрацията  на РОВ  се повтаря  два пъти  в 
проби  от филтратите  (първите  5 ml се изхвърлят ) с помощта  на 
уред  за определяне  на общия  органичен  въглерод  (общия  
окисляем  въглерод ). Ако филтратът  не може  да бъде  анализиран  
същия  ден, той трябва  да се съхранява  в хладилник  до 
следващия  ден. Не се препоръчва  по-продължително  
съхранение . 
Концентрацията  на ХПК  се определя  в проби  от филтратите  с 
аналитична  апаратура  за определяне  на ХКП  по процедурата , 
описана  в позоваване  2 по-долу . 
2. ДАННИ  И ОЦЕНКА  
Определянето  на концентрациите  на РОВ  и ХПК  в пробите  се 
повтаря  поне  два пъти  в съответствие  с 1.6.2 по-горе. 
Разграждането  в момента  Т се изчислява  по формула  (с 
определения ), дадена  в 1.2 по-горе. 
Степента  на разграждане  се закръглява  до най-близкия  цял 
процент . Величината  на разграждането , постигната  в края  на 
изпитването , се отчита  като „Биологично  разграждане  при 
изпитване  по Zahn — Wellens“.  
Забележка : Ако се постигне  пълно  разграждане  преди  изтичане  
на експерименталното  време  и този резултат  се потвърди  чрез 
втори  анализ  на следващия  ден, изпитването  може  да бъде  прик­  
лючено . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следното : 
— първоначалната  концентрация  на веществото , 
— цялата  друга  информация  и експерименталните  резултати , 
отнасящи  се до веществото  за сравнение , ако е използвано , 
и до празната  проба , 
— концентрацията  след  три часа, 
— кривата  на биологично  разграждане  с описание , 
— датата  и мястото , където  са взети  проби  от експеримент­  
алните  организми , състоянието  на адаптиране , използваната  
концентрация  и др., 
— научните  мотиви  за всички  изменения  в експерименталната  
процедура . 
3.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Отнемането  на РОВ  (ХПК ), което  постепенно  настъпва  в продъ­  
лжение  на дни или седмици , показва , че изпитваното  вещество  
се разгражда  биологично . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1058
 
В някои  случаи , обаче , физико -химичната  адсорбция  може  да 
играе  роля , и това се демонстрира  с присъствието  на пълно  
или частично  отнемане  в началото , в рамките  на първите  три 
часа, а разликата  между  контролната  и експерименталната  
надстояща  течност  остава  на неочаквано  по-ниско  ниво . 
Ако трябва  да се направи  разграничаване  между  биологичното  
разграждане  (или частично  разграждане ) и адсорбцията , са необ­  
ходими  допълнителни  изпитвания . 
Това  може  да се направи  по много  начини , но най-убедително  е 
използването  на надстояща  течност  или утайка  като проба  за 
инокулиране  в основно  изпитване  (за предпочитане  респиром­  
етричен  тест). 
Изпитваните  вещества , при които  се наблюдава  голямо  
неадсорбтивно  отнемане  на РОВ  (ХПК ) при това изпитване , 
трябва  да се считат  за потенциално  биологично  разградими . 
Частичното  неадсорбтивно  отнемане  показва , че химическото  
вещество  е подложено  поне  на известно  биологично  
разграждане . Ниското  или близкото  до нула  отнемане  на РОВ  
(ХПК ) може  да се дължи  на потискане  на микроорганизмите  от 
изпитваното  вещество  и това може  да се докаже  и чрез лизиране  
или загуба  на утайка , водещи  до образуване  на мътна  надстояща  
течност . Изпитването  трябва  да бъде  повторено , като се 
използва  по-ниска  концентрация  на изпитваното  вещество . 
Използването  на специфичен  за съединението  аналитичен  метод  
или маркирано  с 14С-изпитвано  вещество  могат  да позволят  по- 
висока  чувствителност . При изпитвано  съединение , маркирано  с 
14С, възстановяването  на 14СО 2 ще потвърди , че е настъпило  
биологично  разграждане . 
Когато  резултатите  са представени  по отношение  на първичното  
биологично  разграждане , ако е възможно , трябва  да бъде  дадено  
обяснение  за изменението  в химичната  структура , което  води  до 
загуба  на отговор  при родителското  изпитвано  вещество . 
Валидирането  на аналитичния  метод  трябва  да бъде  представено  
заедно  с отговора , получен  при празната  експериментална  среда . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) ОИСР , Париж , 1981, Test Guideline  302 B,  Решение  на 
Съвета  C(81) 30 final.  
(2) Приложение  V В.9 Разграждане : Химична  потребност  от 
кислород , Директива  84/449/ ЕИО  на Комисията , 
Официален  вестник  на Европейските  общности  L 251, 
19.9.1984 г. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1059
 
Допълнение  
ПРИМЕР  ЗА ОЦЕНКА  
Органично  съединение : 4- етоксибензоева  киселина  
Теоретична  експериментална  концентрация : 600 mg/l 
Теоретичен  РОВ : 390 mg/l 
Проба  за инокулиране  Пречиствателна  станция  за отпадъчни  води  в 
Концентрация  1 грам  сух материал /литър  
Състояние  на адаптиране : неадаптиран  
Анализ : определяне  на РОВ  
Количество  на пробата : 3 ml 
Контролно  вещество : диетиленгликол  
Токсичност  на съединението : Няма  токсични  ефекти  под 1 000 mg/l 
Използвано  изпитване : Изпитване  с ферме­  
нтационни  епруветки  
Време  на 
изпитванет 0 Контролно  вещество : Изпитвано  вещество  
Празна  
проба  за 
РОВ  ( 1 ) 
mg/l РOB (  1 ) 
mg/l Нетна  
стойност  на 
РОВ  
mg/l Разгражда­  
не 
% РОВ  ( 1 ) 
mg/l Нетна  
стойност  на 
РОВ  
mg/l Разгражда  
не 
% 
0 — — 300,0 — — 390,0 — 
3 часа 4,0 298,0 294,0 2 371,6 367,6 6 
1 ден 6,1 288,3 282,2 6 373,3 367,2 6 
2 дни 5,0 281,2 276,2 8 360,0 355,0 9 
5 дни 6,3 270,5 264,2 12 193,8 187,5 52 
6 дни 7,4 253,3 245,9 18 143,9 136,5 65 
7 дни 11,3 212,5 201,2 33 104,5 93,2 76 
8 дни 7,8 142,5 134,7 55 58,9 51,1 87 
9 дни 7,0 35,0 28,0 91 18,1 11,1 97 
10 дни 18,0 37,0 19,0 94 20,0 2,0 99  
( 1 ) Средни  стойности  от трикратно  отчитане . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1060
 
Фигура  1 
Примери  за криви  на биологично  разградимост
  
Фигура  2 
Примери  за адаптиране  на утайка
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1061
 
В.10. ИЗПИТВАНЕ  ЗА СИМУЛИРАНЕ  НА АЕРОБНО  
ПРЕЧИСТВАНЕ  НА ОТПАДЪЧНИ  ВОДИ : В.10-А: МОДУЛИ  С 
АКТИВНА  УТАЙКА  — В.10-Б: БИОФИЛМИ  
В.10-А: Модули  с активна  утайка  
ВЪВЕДЕНИЕ  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на насоките  за 
изпитване  на ОИСР  (ТG) 303 (2001). През  петдесетте  години  бе уста­  
новено , че нововъведните  повърхностноактивни  вещества  предизвикват  
прекомерно  образуване  на пяна  в станциите  за пречистване  на 
отпадъчни  води  и реките . При аеробна  обработка  посочените  
вещества  не се елиминираха  напълно , а в някои  случаи  ограничаваха  
елиминирането  и на други  органични  вещества . Това  доведе  до 
извършването  на многобройни  изследвания , чийто  обект  бяха  
начините  да бъдат  елиминирани  повърхностноактивните  вещества  от 
отпадъчните  води , както  и съвместимостта  на новите  химикали , 
произведени  от промишлеността , с пречистването  на отпадъчните  
води . За изследванията  бяха  използвани  модели  на модули , 
представящи  двата  основни  типа  аеробна  биологична  обработка  на 
отпадъчните  води  (с активна  утайка  и с капещи  биофилтри ). Би било  
твърде  трудно  и скъпо  да се разпространява  всеки  нов химикал  в 
големите  пречиствателни  станции  и да се наблюдава  провеждането  на 
изпитвания , дори  и на местно  равнище . 
ПЪРВОНАЧАЛНИ  СЪОБРАЖЕНИЯ  
Модули  с активна  утайка  
2. Описани  са образци  на модули  с активна  утайка , чиято  вместимост  
варира  от 300 ml до около  2 000 ml. Някои  от тях в голяма  степен  
наподобяват  истински  пречиствателни  станции , като имат  утаител , от 
който  утаената  утайка  се изпомпва  обратно  в резервоар  за аериране , 
докато  други  не са оборудвани  с утаител  (напр . Swisher) (1). Размерът  
на апарата  е компромис ; от една  страна , апаратът  трябва  да е дост­  
атъчно  голям , за да може  да функционира  правилно  и за да се осигури  
достатъчен  обем  на пробите , без да се нарушава  действието  му, а от 
друга  страна , размерите  му не трябва  да изискват  прекалено  много  
място  и материали . 
3. Досега  двата  модела  апарати , които  са били  широко  и успешно  
използвани , са модулите  на Husmann (2) и модулите  с порест  съд 
(3)(4), използвани  първоначално  за изучаване  на повърхност­  
ноактивните  вещества ; те са описани  в настоящия  метод  за изпитване . 
Успешно  са използвани  и други  модели , напр . модел  на Eckenfelder (5). 
Поради  относително  високата  цена  и усилията  за прилагане  на това 
изпитване  за симулиране , успоредно  бяха  проучени  и по-прости  и 
по-евтини  пресяващи  изпитвания , които  сега са въведени  в глава  В.4 
А—Е от настоящото  приложение . Опитът  с много  повърхност­  
ноактивни  вещества  и други  химикали  показа , че онези  от тях, които  
преминат  пресяващото  изпитване  (за лесна  биоразградимост ), също  се 
разграждат  в изпитването  за симулиране . Някои  от веществата , които  
не са преминали  пресяващите  изпитвания , са преминали  изпитванията  
за присъща  биоразградимост  (глави  В.12 (7) и В.19 (8) от настоящото  
приложение ), но само  някои  от последните  са били  разградени  в 
изпитването  за симулиране , докато  химическите  вещества , които  не 
са преминали  изпитванията  за присъща  биоразградимост , не се 
разграждат  при изпитванията  за симулиране  (9)(10)(11).  
4. За определени  цели  са достатъчни  и изпитванията  за симулиране , 
проведени  при един  набор  от работни  условия . резултатите  се 
изразяват  като процент  на елиминиране  на изпитвания  химикал  или 
на разтворения  органичен  въглерод  (DOC). В настоящия  метод  за 
изпитване  се дава и описание  на такова  изпитване . За разлика  обаче  
от предишната  версия  на настоящата  глава , в която  се описва  само  
един  тип апарати  за третиране  на синтетични  отпадъчни  води  в 
режим  на свързани  модули  при използване  на относително  груб  
метод  за изразходване  на утайка , настоящият  текст  предлага  редица  
изменения . Описани  са алтернативни  варианти  по отношение  на ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1062
 
типовете  апарати , начина  на действие , отстраняването  на 
изразходваните  отпадъчни  води  и утайки . Настоящият  текст  следва  
стриктно  текста  на ISO 11733 (12), който  беше  старателно  проверен  
при подготовката  му, въпреки  че методът  не беше  обект  на кръгово  
изпитване . 
5. За други  цели  се изисква  концентрацията  на изпитвания  химикал  в 
изходящите  отпадъчни  води  да се определи  по-точно , а за това е 
необходим  по-обхватен  метод . Например , скоростта  на изразходване  
на утайката  трябва  да се контролира  по-прецизно  всеки  ден по време  
на периода  на изпитването , а модулите  трябва  да се задействат  с набор  
от различни  стойности  на скоростта  на изразходване . За да може  
методът  да бъде  пълен , изпитванията  трябва  да се проведат  при две 
или три различни  стойности  на температурата : такъв  метод  е описан  от 
Birch (13) (14), а обобщение  на метода  е представено  в допълнение  6. 
настоящото  равнище  на познанията  обаче  е все още недостатъчно , за да 
се определи  кои от кинетичните  модели  са приложими  към 
биоразграждането  на химикалите  при обработката  на отпадъчните  
води  и изобщо  във водна  среда . Прилагането  на кинетичния  модел  на 
Моно , посочен  като пример  в приложение  6, е ограничено  до 
химикали , налични  в концентрации  от 1 mg/l и по-високи , но според  
някои  дори  и това се нуждае  от доказателство . В допълнение  7 се 
изисква  и провеждането  на изпитвания  при концентрации , които  по- 
вярно  отразяват  концентрациите , констатирани  в отпадъчните  води , но 
подобни  изпитвания , както  и изпитванията  от приложение  6, са 
включени  в допълненията , вместо  да бъдат  оформени  като самосто­  
ятелни  методи  за изпитване . 
Филтри  
6. Обръщано  е по-малко  внимание  на моделиране  на капещи  биофилтри , 
може  би защото  оборудването  за моделиране  е с по-големи  размери  и е 
по-малко  компактно  от моделите  на инсталации  с активна  утайка . 
Gerike  et al . са разработили  модули  с капещ  биофилтър  и са ги 
използвали  в режим  на свързани  модули  (15). Посочените  филтри  са 
относително  големи  (с височина  2 m; обем  60 l) и всеки  от тях е 
изисквал  по 2 l/h отпадъчни  води . Baumann et al (16) моделират  
капещи  филтри , като пълнят  тръби  с дължина  1 m и вътрешен  
диаметър  14 mm с ленти  от полиестерен  памук , след  като последните  
са били  потопени  в концентрирана  активна  утайка  за 30 min. 
Изпитваният  химикал , който  е единственият  източник  на въглерод  в 
разтвор  на минерални  соли , се подава  надолу  по вертикално  поста­  
вената  тръба  и се оценява  биоразграждането  чрез измерване  на DOC 
в изходящите  води  и на съдържанието  на CO  2 в отделящия  се газ. 
7. Биофилтрите  са били  моделирани  и по друг  начин  (15); към 
вътрешните  повърхности  на въртящи  се тръби , наклонени  под малък  
ъгъл  спрямо  хоризонталата , се подават  отпадъчни  води  (около  250 
ml/h), съответно  със или без изпитвания  химикал , като събраните  
изходящи  води  се анализират  за DOC и/или за конкретния  изпитван  
химикал . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
8. С настоящия  метод  се цели  да се определи  отстраняването  и 
първичното  и/или окончателното  биоразграждане  на водоразтворими  
органични  химикали  от аеробни  микроорганизми  в изпитвателна  
система  с непрекъснато  действие , при която  се моделира  процес  с 
участие  на активна  утайка . Източниците  на въглерод  и енергия  за 
микроорганизмите  са податливата  на биоразграждане  органична  среда  
и органичният  изпитван  химикал . 
9. При идентични  условия , избрани  така, че да съответстват  на целите  на 
изпитването , се задействат  успоредно  два изпитвателни  модула  с 
непрекъснато  действие  (станции  с активна  утайка  или порести  
съдове ). Обикновено  средното  време  на задържане  в течността  е 6 h, 
а средната  възраст  на утайката  (време  на задържане  на утайката ) е 6 до 
10 дни. Утайката  се изразходва  по един  от два метода , изпитваният  
химикал  обикновено  се добавя  в концентрация  между  10 mg/l и 20 
mg/l разтворен  органичен  въглерод  (DOC) към подаваната  течност  
(органичната  среда ) на само  единия  от модулите . Вторият  модул  се 
използва  като контролен  модул  за определяне  на биоразграждането  
на органичната  среда . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1063
 
10. В често  вземани  проби  от изходящите  води  на модула , в който  е 
въведен  изпитваният  химикал , с помощта  на специфични  анализи  се 
определя  DOC (за предпочитане ) или химично  потребният  кислород  
(ХПК ), както  и концентрацията  на изпитвания  химикал  (ако се 
изисква ). Приема  се, че разликата  между  концентрацията  на DOC или 
ХПК  в изходящите  води  на изпитвателния  и на контролния  модул  се 
дължи  на изпитвания  химикал  или на органичните  му метаболити . За 
да се определи  елиминирането  на изпитвания  химикал , разликата  се 
сравнява  с концентрацията  на DOC или ХПК  във входящите  води , 
дължаща  се на добавения  изпитван  химикал . 
11. По принцип  биоразграждането  може  да се различи  от биоадсорбцията  
чрез внимателно  разглеждане  на кривата  на елиминирането  във 
времето  и обикновено  може  да се потвърди  чрез извършване  на 
изпитване  за лесна  биоразградимост , като се използва  аклиматизиран  
инокулум  от модула , в който  се подава  изпитваният  химикал . 
ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНИЯ  ХИМИКАЛ  
12. Необходимо  е да са известни  чистотата , водоразтворимостта , летли­  
востта  и адсорбционните  характеристики  на изпитвания  химикал , за 
да е възможно  да се извърши  правилно  тълкуване  на резултатите . По 
принцип  летливите  и неразтворимите  химикали  не могат  да бъдат  
изпитвани , освен  ако не са взети  специални  предпазни  мерки  (вж. 
допълнение  5). Необходимо  е да е известна  също  и химичната  
структура  или най-малко  емпиричната  формула , за да се изчисляват  
теоретичните  стойности  и/или да се проверяват  измерените  стойности  
на параметрите , например  теоретично  потребният  кислород  (ТПК ), 
разтвореният  органичен  въглерод  и химично  потребният  кислород  
(ХПК ). 
13. Информацията  за токсичността  на изпитвания  химикал  спрямо  
микроорганизми  (вж. допълнение  4) може  да бъде  полезна  при 
избирането  на подходящи  концентрации  за изпитване  и може  да бъде  
особено  важна  за правилното  тълкуване  при ниски  стойности  на 
биоразграждането . 
ПРАГОВИ  НИВА  
14. При първоначалното  провеждане  на това (потвърдително ) изпитване  за 
симулиране  на първичната  биоразградимост  на повърхностноактивните  
вещества , за пускането  на дадено  повърхностноактивно  вещество  на 
пазара  се изискваше  елиминирането  на повече  от 80 % от конкретния  
химикал . Ако не е постигната  стойността  от 80 %, може  да се приложи  
(потвърдително ) изпитване  за симулиране  и повърхностноактивното  
вещество  да се пусне  на пазара , само  ако повече  от 90 % от конкретния  
химикал  бъде  елиминиран . По принцип  към химикалите  не се 
подхожда  според  положителния  или отрицателния  резултат  от 
изпитване , и стойността  в проценти  на постигнатото  елиминиране  
може  да се използва  в приблизителни  изчисления  на вероятната  конце­  
нтрация  в околната  среда , която  да се използва  в оценките  на риска , 
който  химикалите  пораждат . Налице  е тенденция  резултатите  да 
следват  схема  „всичко  или нищо “. В множество  изследвания  на 
чисти  химикали  стойността  в проценти  на елиминирането  на DOC бе 
над 90 % при повече  от три четвърти  и над 80 % при повече  от 90 % 
от химикалите , показали  значителна  степен  на биоразградимост . 
15. Относително  малко  химикали  (напр . повърхностноактивни  вещества ) са 
налични  в отпадъчните  води  в концентрацията  (около  10 mg С/l), която  
се използва  в настоящото  изпитване . Някои  химикали  може  да имат  
инхибиращо  въздействие  при тези концентрации , докато  кинетиката  на 
елиминирането  на други  може  да е различна  при ниски  концентрации . 
По-точна  оценка  на разграждането  може  да се извърши , като се 
използват  модифицирани  методи  и близки  до действителните  ниски  
концентрации  на изпитваният  химикал , а събраните  данни  могат  да 
се използват  за изчисляване  на кинетични  константи . Все още обаче  
необходимите  експериментални  техники  не са напълно  валидирани , 
нито  пък са установени  кинетичните  модели , които  описват  
реакциите  на биоразграждане  (вж. допълнение  7). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1064
 
РЕФЕРЕНТНИ  ХИМИКАЛИ  
16. За да се гарантира , че експерименталната  процедура  се изпълнява  
правилно , полезно  е понякога  да се изпитват  химикали , чието  
поведение  е познато , успоредно  с проучването  на изпитваните  
химикали . Такива  химикали  са например  адипиновата  киселина , 2- 
фенилфенолът , 1-нафтолът , дифеновата  киселина , 1-нафтоената  
киселина  и др. (9) (10) (11).  
ВЪЗПРОИЗВОДИМОСТ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  ОТ ИЗПИТВАНИЯТА  
17. Налични  са много  по-малко  доклади  за изследвания  въз основа  на 
изпитвания  за симулиране , отколкото  за изпитвания  за лесна  
биоразградимост . Възпроизводимостта  между  (едновременно  
провеждани ) повторения  е добра  (в рамките  на 10—15 %) за 
изпитваните  химикали , които  се разграждат  до 80 % или повече , но 
за по-трудно  разградимите  химикали  варирането  е по-високо . Освен  
това, при различни  обстоятелства  в рамките  на 9-те седмици , 
определени  за изпитването , при някои  гранични  химикали  са 
отчетени  силно  различаващи  се резултати  (напр . 10 %, 90 %).  
18. Резултатите , получени  с двата  типа  апарати , не се различават  
съществено , но някои  химикали  се разграждат  в по-голяма  степен  и 
по-пълно  в битови  отпадъчни  води , отколкото  в синтетични  отпадъчни  
води  по ОИСР . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Апаратура  
Системи  за изпитване  
19. Системата  за изпитване  за един  изпитван  химикал  се състои  от изпитв­  
ателен  модул  и контролен  модул ; ако обаче  се извършват  само  спец­  
ифични  анализи  (първично  биоразграждане ), се изисква  само  изпитв­  
ателен  модул . Един  контролен  модул  може  да се използва  за 
множество  изпитвателни  модули , в които  се въвежда  един  и същ 
химикал  или различни  химикали . При свързване  (допълнение  3) 
всеки  изпитвателен  модул  трябва  да има собствен  контролен  модул . 
Изпитвателната  система  може  да бъде  модел  на станция  с активна  
утайка , модул  на Husmann ( допълнение  1, фигура  1) или модул  с 
порест  съд (допълнение  1, фигура  2). И в двата  случая  са необходими  
съдове  с подходящ  размер  за събиране  на входящите  и на изходящите  
води , както  и помпи  за дозиране  на входящите  води , или смесени  с 
разтвора  на изпитвания  химикал , или поотделно . 
20. Всеки  модул  за активна  утайка  се състои  от съд за аериране  с известна  
вместимост  от около  3 литра  активна  утайка  и сепаратор  (вторичен  
утаител ) с вместимост  около  1,5 литра ; обемите  могат  да се променят  
до известна  степен  чрез коригиране  на височината  на утаителя . 
Допускат  се и съдове  с друг  размер , ако се подлагат  на съпоставими  
хидравлични  натоварвания . Ако не е възможно  температурата  в 
помещението , в което  се провежда  изпитването , да се поддържа  в 
желаните  граници , се препоръчва  използването  на съдове  с водна  
риза с термостат . Активната  утайка  се връща  непрекъснато  или на 
равни  интервали  от сепаратора  в съда  за аериране , като се използва  
въздушна  (ерлифт ) или дозираща  помпа . 
21. Системата  с порест  съд се състои  от вътрешен  порест  цилиндър  с 
конусообразно  дъно , поставен  в малко  по-голям  съд със същата  
форма , но изработен  от непропусклива  пластмаса . Подходящ  
материал  за порестия  съд е порест  полиетилен  с максимален  размер  
на порите  90 μm и дебелина  2 mm. Отделянето  на утайката  от 
третираната  органична  среда  се осъществява  чрез диференциално  
преминаване  през порестата  стена . Изходящата  течност  се събира  в 
пръстеновидното  пространство , откъдето  прелива  в събирателния  съд. 
Тъй като няма  утаяване , няма  и връщане  на утайката . Цялата  система  
може  да бъде  монтирана  в контролирана  чрез термостат  водна  баня . На 
началните  етапи , порестите  контейнери  се запушват  и могат  да прелеят . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1065
 
В такъв  случай  порестата  облицовка  се заменя  с чиста  такава , като 
първо  утайката  се изпомпва  в чиста  кофа , а запушената  облицовка  се 
изважда . След  като се избърше  непропускливият  външен  цилиндър , се 
слага  чиста  облицовка  и утайката  се връща  в контейнера . Ако по 
стените  на запушената  облицовка  остане  утайка , тя трябва  да се 
остърже  и прехвърли . Запушените  контейнери  се почистват , като се 
използва  тънка  струя  вода , за да се отмие  останалата  утайка , 
контейнерът  се накисне  първо  в разреден  разтвор  на натриев  хипо­  
хлорит , а после  във вода  и след  това се изплакне  обилно  с вода . 
22. За аерацията  на утайката  в съдовете  за аериране  в двете  системи  се 
изискват  подходящи  техники , например  синтеровани  кубове  
(дифузорни  камъни ) и въздух  под налягане . Ако е необходимо , 
въздухът  се пречиства  чрез пропускане  през подходящ  филтър  и се 
промива . През  системата  трябва  да преминава  достатъчно  въздух , 
така че да се запазват  аеробните  условия  и парчетата  утайка  да се 
поддържат  в суспензия  през цялото  времетраене  на изпитването . 
Апарат  за филтруване  или центрофуга  
23. Устройство  за филтруване  на проби  с мембранни  филтри  с подходящ  
размер  на порите  (номинален  диаметър  на отворите  0,45 μm), които  
абсорбират  разтворимите  органични  химикали  и освобождават  
органичен  въглерод  в минимална  степен . Ако се използват  филтри , 
които  освобождават  органичен  въглерод , те грижливо  се промиват  с 
гореща  вода , за да се отстрани  отмиваемият  органичен  въглерод . Като  
алтернатива  може  да използва  центрофуга , която  е в състояние  да 
развие  40 000 m/s  2 . 
Аналитично  оборудване  
24. Апарати , позволяващи  да се определи : 
— DOC ( разтвореният  органичен  въглерод ) и TOC (общият  органичен  
въглерод ), или ХПК  (химически  потребният  кислород ), 
— специфичен  химикал , ако се изисква , 
— твърди  вещества  в суспензия , рН, концентрация  на кислорода  във 
водата , 
— температура , киселинност  и алкалност , 
— амониеви  йони , нитрити  и нитрати , ако изпитването  се провежда  в 
условията  на азотфиксиране . 
Води  
25. Чешмяна  вода  със съдържание  на DOC по-малко  от 3 mg/l. Определя  се 
алкалността , ако не е вече известна . 
26. Дейонизирана  вода  със съдържание  на DOC по-малко  от 2 mg/l.  
Органична  среда  
27. В качеството  на органична  среда  се допуска  използването  на синтетични  
отпадъчни  води , битови  отпадъчни  води , или на смес  от тях. Беше  
доказано  (11) (14), че използването  само  на битови  отпадъчни  води  
често  води  до повишено  елиминиране  на DOC и дори  позволява  
елиминирането  и биоразграждането  на някои  химикали , които  не са 
биоразградими  при използване  на синтетични  отпадъчни  води  по 
рецептурата  на ОИСР . Също  така, добавянето , постоянно  или на 
порции , на битови  отпадъчни  води  често  стабилизира  активната  
утайка , включително  и способността  на последната  добре  да се утаява . 
Поради  това се препоръчва  използването  на битови  отпадъчни  води . 
Следва  да се измерва  концентрацията  на DOC или ХПК  във всяка  
нова  партида  органична  среда . Киселинността  или алкалността  на орга­  
ничната  среда  следва  да бъде  известна . Може  да се наложи  в орга­  
ничната  среда  да се добави  подходящ  буфер  (натриев  хидрогенкарбонат  
или калиев  дихидрогенфосфат ), ако тя е с ниска  киселинност  или 
алкалност , за да се поддържа  рН от около  7,5 ± 0,5 в съда  за аериране  
по време  на изпитването . Количеството  на необходимия  буфер , както  и 
моментът  на добавянето  трябва  да се определят  във всеки  конкретен  
случай . Когато  непрекъснато  или периодично  се използват  смеси , стой­  
ността  на DOC (или ХПК ) на сместа  трябва  да се поддържа  приблиз­  
ително  постоянна , например  чрез разреждане  с вода . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1066
 
Синтетични  отпадъчни  води  
28. В литър  чешмяна  вода  се разтварят : пептон , 160 mg; месен  екстракт , 
110 mg; уреа , 30 mg; безводен  дикалиев  хидрогенфосфат  (K  2 HPO  4 ), 28 
mg; натриев  хлорид  (NaCl) 7 mg; калциев  хлорид  дихидрат  (CaCl  2 · 
2H 2 O), 4 mg; магнезиев  сулфат  хептахидрат  (Mg  2 SO 4 · 7H  2 0), 2 mg. 
Тези  синтетични  отпадъчни  води  по ОИСР  са примерни , като те 
осигуряват  средна  концентрация  на DOC във входящите  води  от 
около  100 mg/l. Като  алтернатива  е възможно  използването  на друг  
състав  с приблизително  същата  концентрация  на DOC, който  е 
близък  до състава  на истинските  отпадъчни  води . Ако се изисква  
използването  на по-малко  концентрирана  входяща  течност , синт­  
етичните  отпадъчни  води  се разреждат , например  в съотношение  1:1, 
с чешмяна  вода , за да се получи  концентрация  от около  50 mg/l. Така  
разредените  входящи  води  ще осигурят  по-добри  условия  за растеж  на 
нитрифициращите  организми  и това изменение  следва  да се използва , 
ако се налага  изпитване  за симулиране  на пречиствателни  станции , 
работещи  при условия  на нитрифициране . Синтетичните  отпадъчни  
води  могат  да бъдат  приготвени  с дестилирана  вода  в концентрирана  
форма , и да се съхраняват  при температура  около  1 °С до една  
седмица . Когато  е необходимо , те се разреждат  с чешмяна  вода . 
(Тази  среда  е незадоволителна  — напр . концентрацията  на азот е 
много  висока , съдържанието  на въглерод  е относително  ниско , но не 
е предложено  нищо  по-добро , освен  да се добави  още фосфат  като 
буфер  и допълнително  количество  пептон ). 
Битови  отпадъчни  води  
29. Използват  се прясно  утаени  отпадъчни  води , събирани  ежедневно  от 
пречиствателните  станции , приемащи  предимно  битови  отпадъчни  
води . Те трябва  да се събират , преди  да се подложат  на първично  
утаяване , от преливника  на първия  утаител , или от входа  на пречиств­  
ателна  станция  с активна  утайка , и почти  да не съдържат  груби  
частици . Отпадъчните  води  може  да се използват  след  съхранение  в 
продължение  на няколко  дни (но обикновено  не повече  от седем  дни) 
при около  4 °С, ако се докаже , че стойността  на DOC (или ХПК ) не е 
намаляла  значително  (т.е. с по-малко  от 20 %) по време  на 
съхранението . С цел да се ограничат  смущенията  в системата , стой­  
ността  на DOC (или ХПК ) на всяка  нова  партида  следва  да се коригира  
преди  употреба  до подходяща  постоянна  стойност , например  чрез 
разреждане  с чешмяна  вода . 
Активна  утайка  
30. За инокулацията  се взема  активна  утайка  от резервоара  за аериране  на 
правилно  експлоатирана  пречиствателна  станция  за отпадъчни  води  
или от лабораторен  модул  с активна  утайка , които  преработват  
предимно  битови  отпадъчни  води . 
Изходни  разтвори  на изпитвания  химикал  
31. От химикалите  с добра  разтворимост  се приготвят  изходни  разтвори  с 
подходяща  концентрация  (напр . от 1 до 5 g/l) в дейонизирана  вода  или 
в минералната  част на синтетичните  отпадъчни  води . (за неразтворими  
и летливи  химикали , вж. допълнение  5). Определят  се DOC и общият  
органичен  въглерод  (TOC) на изходния  разтвор , като измерванията  се 
повтарят  за всяка  нова  партида . Ако разликата  между  DOC и TOC е по- 
голяма  от 20 %, проверява  се разтворимостта  във вода  на изпитвания  
химикал . DOC или концентрацията  на изпитвания  химикал , измерени  
чрез специфичен  анализ  на изходния  разтвор , се сравняват  с номин­  
алната  стойност , за да се установи  дали  добивът  е достатъчно  добър  
(обикновено  може  да се очаква  добив  > 90 %). Проверява  се, по- 
специално  за дисперсии , дали  DOC може  да се използва  като 
параметър  за анализ , или може  да се използва  само  аналитична  
техника , специфична  за изпитвания  химикал . При дисперсии  се 
изисква  центрофугиране  на пробите . За всяка  нова  партида  чрез спец­  
ифичен  анализ  се определят  DOC, ХПК  или изпитваният  химикал . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1067
 
32. Определя  се рН на изходния  разтвор . Получаването  на екстремни  
стойности  означава , че добавянето  на химикала  може  да повлияе  на 
pH на активната  утайка  в системата  за изпитване . В този случай  
изходният  разтвор  се неутрализира  за получаване  на стойност  на pH, 
равна  на 7 ± 0,5 с малки  количества  неорганична  киселина  или основа , 
като се избягва  утаяване  на изпитвания  химикал . 
ПРОЦЕДУРА  
33. Описаната  процедура  е за модули  с активна  утайка ; за система  с порест  
съд тя трябва  да бъде  леко  адаптирана . 
Приготвяне  на инокулум  
34. В началото  на изпитването  системата  за изпитване  се инокулира  с 
активна  утайка  или с инокулум  с ниска  концентрация  на микроорга­  
низми . Преди  употреба  инокулумът  се съхранява  в проветриво  място  
при стайна  температура  и се използва  в рамките  на 24 h. В първия  
случай  се взема  проба  активна  утайка  от резервоара  за аериране  на 
ефикасно  работеща  биологична  пречиствателна  станция  за отпадъчни  
води  или от лабораторна  пречиствателна  станция , която  получава  
предимно  битови  отпадъчни  води . Ако трябва  да се симулират  нитриф­  
ициращи  условия , взема  се утайка  от пречиствателна  станция  за 
отпадъчни  води , която  работи  при условия  на нитрификация . 
Определя  се концентрацията  на суспендираните  твърди  вещества  и, 
ако е необходимо , извършва  се концентриране  на утайката  чрез 
утаяване , така че добавеният  към системата  за изпитване  обем  да е 
минимален . Вземат  се мерки  началната  концентрация  на сухо  
вещество  да бъде  около  2,5 g/l.  
35. Във втория  случай  като инокулум  се използват  2 ml/l до 10 ml/l от 
изходящите  води  от биологична  пречиствателна  станция  за битови  
отпадъчни  води . За да се осигури  наличието  на възможно  най-много  
различни  видове  бактерии , може  да се окаже  полезно  да се добави  
инокулум  от различни  други  източници , например  повърхностни  
води . В този случай  активната  утайка  ще се развива  и расте  в 
системата  за изпитване . 
Дозиране  на органичната  среда  
36. Следва  да се гарантира , че контейнерите  за входящите  и за изходящите  
води , а също  и тръбите  от едните  към другите , са старателно  
почистени , за да се предотврати  микробен  растеж  в началото  на 
изпитването  и по време  на самото  изпитване . Системите  за изпитване  
се сглобяват  в помещения , където  температурата  се контролира  (обик­  
новено  в интервала  20—25 °C) или се използват  модули  с водна  риза. 
Подготвя  се достатъчен  обем  от изискваната  органична  среда  (точки  
27—29). Първоначално  съдът  за аериране  и утаителят  се напълват  с 
органична  среда  и се добавя  инокулумът  (точки  34—35). Задейства  се 
устройството  за аериране  така, че утайката  се поддържа  в суспензия  и в 
аеробно  състояние , и се започва  дозирането  на входящите  води  и 
рециклирането  на утаената  утайка . Органичната  среда  от съдовете  за 
съхранение  се дозира  в съдовете  за аериране  (точки  20—21) на изпитв­  
ателния  и контролния  модул  и се събират  съответните  изходящи  води  в 
подобни  съдове  за съхранение . За да се осигури  нормално  време  на 
задържане  на течността , равно  на 6 часа, органичната  среда  се 
изпомпва  с дебит  0,5 l/h. За да се потвърди  този дебит , измерва  се 
дневното  дозирано  количество  органична  среда , като се отбелязва  
намаляването  на обемите  на средата  в съдовете  за съхранение . За 
определяне  на въздействието  на периодичното  освобождаване  и 
„ударното “ въвеждане  на химикали  ще са необходими  други  режими  
на дозиране . 
37. Ако органичната  среда  се приготвя  за употреба  за период , по-дълъг  от 
един  ден, необходимо  е охлаждане  до около  4 °С или други  подходящи  
методи  за запазване  и предотвратяване  на микробен  растеж  и 
биологично  разграждане  извън  изпитвателните  модули  (точка  29). 
Ако се използват  синтетични  отпадъчни  води , възможно  е да се 
подготви  концентриран  изходен  разтвор  (напр . с концентрация  10 
пъти  по-висока  от нормалната , точка  28), който  да се съхранява  при 
температура  от около  4 °С. Преди  употреба  изходният  разтвор  може  да 
се смесва  по подходящ  начин  със съответния  обем  чешмяна  вода ; 
възможно  е вместо  това разтворът  да се въвежда  пряко , а съответното  
количество  чешмяна  вода  да се подава  отделно . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1068
 
Дозиране  на изпитвания  химикал  
38. Съответният  обем  изходен  разтвор  на изпитвания  химикал  се дозира  
(точка  31) в съда  за съхранение  на входящите  води  или се дозира  пряко  
с отделна  помпа  в съда  за аериране . Нормалната  средна  концентрация  
на изпитване  във входящите  води  следва  да е между  10 mg/l и 20 mg/l 
DOC, като горната  граница  на концентрацията  е не по-висока  от 50 
mg/l. Ако разтворимостта  във вода  на изпитвания  химикал  е малка , или 
ако е вероятно  да се прояви  токсично  въздействие , концентрацията  
може  да се намали  до 5 mg/l или дори  по-малко , но само  ако е 
наличен  подходящ  специфичен  метод  за анализ  и той се прилага  
(могат  да се добавят  диспергирани  малко  разтворими  във вода  
изпитвани  химикали , като се използват  специални  техники  за 
дозиране , вж. допълнение  5). 
39. Започва  се добавянето  на изпитвания  химикал  след  период , през който  
системата  се е стабилизирала  и е започнала  ефикасно  (около  80 %) да 
елиминира  DOC на органичната  среда . Преди  да се добави  изпитваният  
химикал , е важно  да се провери  дали  всички  модули  работят  еднакво  
ефикасно ; ако това не е така, смесването  на утайката  от отделните  
модули  и разпределянето  на равни  обеми  от нея в отделните  модули  
обикновено  помага . Когато  се използва  инокулум  от (приблизително ) 
2,5 g/l (сухо  тегло ) активна  утайка , изпитваният  химикал  може  да бъде  
добавен  още в началото  на изпитването , тъй като прякото  добавяне  на 
нарастващи  количества  от началото  има предимството , че създава  
условия  активната  утайка  да може  по-добре  да се приспособи  към 
изпитвания  химикал . Независимо  от начина  на добавяне  на изпитвания  
химикал , препоръчва  се съответните  дебит  и/или обем (и) в съда (съ­ 
довете ) за съхранение  редовно  да се измерват . 
Боравене  с активната  утайка  
40. Независимо  от инокулума , по време  на изпитването  концентрацията  на 
твърди  вещества  в активната  утайка  обикновено  се стабилизира  между  
граничните  стойности  от 1 до 3 g/l ( сухо  тегло ) в зависимост  от 
качеството  и концентрацията  на органичната  среда , работните  
условия , естеството  на наличните  микроорганизми  и въздействието  на 
изпитвания  химикал . 
41. Или поне  веднъж  седмично  се определят  суспендираните  твърди  
вещества  в съдовете  за аериране  и излишната  утайка  се отстранява , 
за да се поддържа  концентрация  от 1 g/l до 3 g/l (сухо  тегло ), или се 
контролира  средната  възраст  на утайката  да бъде  постоянна  величина , 
обикновено  в интервала  от 6 до 10 дни. Ако например  избраното  
средно  време  на задържане  на утайката  е 8 дни, ежедневно  се 
отстранява  1/8 от обема  на активната  утайка  в съда  за аериране  и се 
изхвърля . Описаните  действия  се извършват  ежедневно  или, за предп­  
очитане , се използва  автоматична  помпа , която  се задейства  на 
определени  интервали . Запазването  на постоянна , или изменяща  се в 
тесни  граници  концентрация  на суспендираните  твърди  вещества  не 
спомага  да се поддържа  постоянно  време  на задържане  на утайката , 
което  е променливата , определяща  стойността  на концентрацията  на 
изпитвания  химикал  в изходящите  води . 
42. През  цялото  времетраене  на изпитването  поне  веднъж  на ден се 
отстранява  всякаква  утайка , полепнала  по стените  на съда за аериране  
и утаителя , така че тя да премине  обратно  в суспензия . Всички  тръби  
редовно  се проверяват  и чистят , за да се предотврати  растежът  на 
биофилм . Утаената  утайка  се рециклира  от утаителя  в съда  за 
аериране , за предпочитане  чрез помпи , които  се задействат  на 
определен  интервал . В системата  с порест  съд не се извършва  рецик­  
лиране , но трябва  да се гарантира , че са поставени  чисти  вътрешни  
контейнери , преди  обемът  в съда  да се е повишил  значително  (точка  21). 
43. При модули  от тип „Husmann“ може  да се получи  лошо  утаяване  или 
загуба  на утайка . На това може  да се противодейства , като 
едновременно  в изпитвателните  и в контролните  модули  се предприеме  
едно  или няколко  от изброените  по-долу  действия : 
— на равни  интервали , напр . седмично , може  да се добавя  прясна  
утайка  или флокулант  (например  2 ml/съд FeCl  3 с концентрация  
50 g/l), но трябва  да се удостовери , че добавянето  на FeCl  3 не 
води  до реакция  или утаяване  на изпитвания  химикал , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1069
 
— ерлифтната  помпа  може  да бъде  заменена  от перисталтична  помпа , 
като по този начин  се създава  възможност  да се използва  потокът  
от рециркулирана  утайка , чийто  обем  е приблизително  равен  на 
този на постъпващата  течност , и да се създаде  анаеробна  зона в 
утаената  утайка  (геометрията  на ерлифтната  помпа  налага  
ограничението  минималният  дебит  на върнатата  утайка  да бъде  
около  12 пъти  този на входящите  води ), 
— утайката  може  да се изпомпва  на определени  интервали  от 
сепаратора  към съда  за аериране  (напр . 5 min. на всеки  2,5 h 
за рециклиране  на 1 l/h до 1,5 l/h),  
— за да се предотвратят  загуби  поради  образуване  на пяна , може  
да използват  нетоксични  антипенители  при минимална  конце­  
нтрация  (напр . силиконово  масло ), 
— през утаената  в утаителя  утайка  може  да се пропуска  въздух  на 
кратки  мощни  вълни  (напр . 10 сек. на всеки  час), 
— органичната  среда  може  да бъде  дозирана  на определени  
интервали  в съда  за аериране  (напр . 3 до 10 минути  на всеки  час). 
Вземане  на проби  и анализ  
44. Редовно  се измерват  концентрацията  на разтворения  кислород , 
температурата  и стойността  на рН на активната  утайка  в съдовете  за 
аериране . Гарантира  се, че винаги  има достатъчно  количество  кислород  
(> 2 mg/l) и че температурата  се поддържа  в необходимия  обхват  (обик­  
новено  20 °C до 25 °C). Стойността  на pH се поддържа  равна  на 7,5 ± 0,5 с 
помощта  на дозиране  на малки  количества  неорганична  основа  или 
киселина  в съда  за аериране  или във входящите  води , или чрез увеличаване  
на буферния  капацитет  на органичната  среда  (вж. точка  27). Когато  
протича  нитрификация , се получава  киселина , като окисляването  на 1 
mg N произвежда  еквивалента  на около  7 mg CO  3 – . Честотата  на 
измерване  зависи  от подлежащия  на измерване  параметър  и от стабил­  
ността  на системата  и може  да варира  от измервания  ежедневно  до 
веднъж  седмично . 
45. Измерва  се DOC (или ХПК ) на водите , с които  се захранват  контролните  
съдове  и съдовете  за провеждане  на изпитването . С помощта  на спец­  
ифичен  анализ  се измерва  концентрацията  на изпитвания  химикал  в 
изпитваните  входящи  води  или тя се изчислява  въз основа  на конце­  
нтрацията  на изходния  разтвор  (точка  31), използвания  обем  и колич­  
еството  на отпадъчните  води , дозирани  в изпитвателния  модул . С цел да 
се намали  варирането  на данните  за концентрацията , препоръчва  се 
концентрацията  на изпитвания  химикал  да се изчислява . 
46. Вземат  се подходящи  проби  от събраните  изходящи  води  (напр . такива , 
които  са събирани  24 часа) и се филтруват  през мембранен  филтър  с 
размер  на порите  0,45 μm или се центрофугират  при около  40 000 m/s  2 
в продължение  на около  15 мин. Центрофугирането  трябва  да се 
използва , ако е трудно  да се извърши  филтруване . С помощта  на 
анализ , специфичен  за изпитвания  химикал , се определя  DOC (или 
ХПК ) най-малко  два пъти  за измерване  на крайното  и, ако се 
изисква , на първичното  биоразграждане . 
47. Използването  на ХПК  може  да доведе  до проблеми  по отношение  на 
анализа  при ниски  концентрации  и поради  това то се препоръчва , само  
ако концентрацията  при изпитването  е достатъчно  висока  (около  30 
mg/l). Освен  това, при силно  адсорбируеми  химикали  се препоръчва  
количеството  адсорбиран  химикал  в утайките  да се измерва , като се 
използва  метод  за анализ , специфичен  за изпитвания  химикал . 
48. Честотата  на вземане  на проби  зависи  от очакваната  продължителност  
на изпитването . Препоръчителната  честота  е три пъти  на седмица . След  
като се постигне  ефикасно  функциониране  на модулите , се изчаква  от 1 
до максимум  6 седмици  след  въвеждането  на изпитвания  химикал , за 
адаптиране  с оглед  постигане  на стационарно  състояние . За да се 
оценят  резултатите  от изпитването , за предпочитане  е да се получат  
най-малко  15 валидни  стойности  по време  на фазата  на плато  (точка  
59), която  обикновено  е с продължителност  3 седмици . Изпитването  
може  да бъде  приключено , ако е постигната  достатъчна  степен  на 
елиминиране  (напр . > 90 %) и са на разположение  15-те стойности , 
които  представляват  анализи , извършвани  всеки  работен  ден в период  
от три седмици . Обикновено  изпитванията  не трябва  да продължават  
повече  от 12 седмици  след  добавянето  на изпитвания  химикал . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1070
 
49. Ако утайката  претърпява  нитрификация  и ако трябва  да се проучи  
въздействието  на изпитвания  химикал  върху  нитрификацията , пробите  
от изходящите  води  от контролния  и от изпитвателния  модул  се 
анализират  поне  веднъж  седмично  за амониеви  йони , и/или нитрити  
плюс  нитрати . 
50. Всички  анализи  се извършват  възможно  най–бързо , особено  
определянето  на съдържанието  на азот. Ако се налага  отлагане  на 
анализите , пробите  се съхраняват  при около  4 °С на тъмно  в пълни  
догоре  и плътно  запушени  бутилки . Ако се налага  пробите  да се 
съхраняват  повече  от 48 часа, те трябва  да се съхранят  чрез дълбоко  
замразяване , ацидификация  (напр . 10 ml/l разтвор  на сярна  киселина  с 
концентрация  400 g/l) или чрез добавяне  на подходящо  токсично  
вещество  (напр . 20 ml/l разтвор  на живачен (II) хлорид  с концентрация  
10 g/l). Трябва  да се вземат  мерки  техниките  за съхранение  да не 
влияят  върху  резултатите  на анализа . 
Свързване  на изпитвателните  модули  
51. Ако трябва  да се използва  свързване  (допълнение  3), всеки  ден трябва  
да се извършва  обмен  на едно  и също  количество  активна  утайка  
(150—1 500 ml при съдове  за аериране , събиращи  3 литра  активна  
утайка ) между  съда  за аериране  на изпитвателния  и този на неговия  
контролен  модул . Ако активната  утайка  силно  адсорбира  изпитвания  
химикал , се извършва  обмен  само  на супернатанта  в утаителите . И в 
двата  случая  при изчисляването  на резултатите  от изпитването  се 
използва  корекционен  коефициент  (точка  55).  
ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Обработка  на резултатите  
52. Изчислява  се процентът  на елиминиране  на изпитвания  химикал , въз 
основа  на данните  за DOC или ХПК  за всяка  предвидена  във времето  
оценка , като се използва  уравнението : 
D t ¼ C s Ä ðE Ä E o Þ 
C s Ü 100 
където  
D t = на DOC или ХПК  в момент  t 
C s = DOC или ХПК  във входящите  води , дължащи  се на изпитвания  
химикал , за предпочитане  стойност , очаквана  въз основа  на 
изходния  разтвор  (mg/l)  
E = измерена  стойност  на DOC или на ХПК  в изпитваните  
изходящи  води  в момент  t (mg/l)  
E o = измерена  стойност  на DOC или ХПК  в контролните  изходящи  
води  в момент  t (mg/l)  
53. Степента  на елиминиране  на DOC или ХПК  на органичната  среда  в 
контролния  модул  е полезна  информация  при оценката  на 
биоразграждането , извършвано  от активната  утайка  по време  на 
изпитването . Процентът  на елиминиране  се изчислява  с уравнението : 
D B ¼ C M Ä E o 
C M Ü 100 
където  
D B = на DOC или ХПК  на органичната  среда  в контролния  модул  в 
момент  t 
C M = DOC или ХПК  на органичната  среда  във входящите  води  на 
контролния  модул  в момент  t ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1071
 
Без да е задължително , може  да се изчисли  процентът  на елиминиране  
на DOC или ХПК , дължащи  се на органичната  среда  и изпитвания  
химикал  в изпитвателния  модул , като се използва  уравнението : 
D T ¼ C T Ä E 
C T Ü 100 
където  
D T = процент  на елиминиране  на DOC или ХПК  във всички  
изпитвани  входящи  води  
C T = DOC или ХПК  на всички  изпитвани  входящи  води  или 
изчислени  въз основа  на изходния  разтвор  (mg/l)  
54. Изчислява  се елиминирането  на изпитвания  химикал , ако последният  е 
измерван  със специфичен  метод  за анализ  във всеки  момент  на 
оценката , като се използва  уравнението : 
D ST ¼ S i Ä S e 
S i Ü 100 
където  
D ST = процент  на първично  елиминиране  на изпитвания  химикал  в 
момент  t 
S i = измерена  или очаквана  концентрация  на изпитвания  химикал  в 
изпитваните  входящи  води  (mg/l)  
S e = измерена  концентрация  на изпитвания  химикал  в изпитваните  
изходящи  води  момент  t (mg/l)  
55. Ако е използван  режим  на свързване , разреждането  на изпитвания  
химикал  в съда  за аериране  се компенсира  с обмена  на утайка , с 
използването  на корекционен  коефициент  (вж. допълнение  3). Ако 
средното  време  на задържане  на течността  е 6 часа и в съда  за 
аериране  е заменена  половината  от обема  на активната  утайка , за да 
се получат  истинските  стойности  за степента  на елиминиране  D tc на 
изпитвания  химикал , определените  дневни  стойности  на 
елиминирането  (D  t , точка  52) трябва  да се коригират  с помощта  на 
уравнението : 
D tc ¼ 4D t Ä 100 
3 
Изразяване  на резултатите  от изпитването  
56. Нанасят  се графично  стойностите  на процента  на елиминиране  D t (или 
D tc ) и на D st , ако са известни , в зависимост  от времето  (вж. допълнение  
2). От формата  на кривата  на елиминирането  на изпитвания  химикал  
(като такъв  или като DOC) могат  да се направят  някои  изводи  за 
процеса  на елиминиране . 
Адсорбция  
57. Ако още в началото  на изпитването  се наблюдава  силно  елиминиране  
на изпитвания  химикал , изразен  като DOC, изпитваният  химикал  
вероятно  е елиминиран  чрез адсорбция  в твърдите  вещества  на 
активната  утайка . Възможно  е да се докаже  това, като се определи  
адсорбираният  изпитван  химикал  с помощта  на специфичен  анализ . 
Не е обичайно  елиминирането  на DOC на адсорбируеми  химикали  да 
се запазва  високо  през цялото  изпитване . нормално  е първоначално  да 
е налице  висока  степен  на елиминиране , която  постепенно  намалява  до 
достигането  на равновесна  стойност . Ако обаче  адсорбируемият  
изпитван  химикал  е способен  да предизвика  аклиматизиране  на 
микробната  популация  по един  или друг  начин , степента  на 
елиминиране  на DOC на изпитвания  химикал  може  по-късно  да 
нарасне  и да достигне  до високи  стойности  в платото . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1072
 
Латентна  фаза  
58. Както  и в статичните  пресяващи  изпитвания , преди  биоразграждането  
да се прояви  изцяло  при много  изпитвани  химикали  се наблюдава  
латентна  фаза . По време  на латентната  фаза , аклиматизирането  или 
адаптирането  на разграждащите  бактерии  протича  при почти  пълна  
липса  на елиминиране  на изпитвания  химикал ; след  това започва  
първоначалният  растеж  на бактериите . Когато  са елиминирани  около  
10 % от първоначалното  количество  от изпитвания  химикал  (след  
адсорбция , ако е протекла  такава ), тази фаза  завършва  и се счита , че 
започва  фазата  на разграждането . Латентната  фаза  често  е много  
променлива  и слабо  възпроизводима . 
Фаза  на плато  
59. Фазата  на плато  на кривата  на елиминирането  в непрекъснато  
изпитване  се определя  като фаза , по време  на която  разграждането  е 
максимално . Фазата  на плато  следва  да трае поне  3 седмици  и да бъде  
определена  от около  15 измерени  валидни  стойности . 
Средна  степен  на елиминиране  на изпитвания  химикал  
60. Средната  стойност  се изчислява  въз основа  на стойностите  на 
елиминирането  (D  t ) на изпитвания  химикал  във фазата  на плато . След  
закръгляване  към най-близкото  цяло  число  (1 %) тя представлява  
степента  на елиминиране  на изпитвания  химикал . Препоръчва  се 
също  да се изчисли  и доверителен  интервал  от 95 % от средната  
стойност . 
Елиминиране  на органичната  среда  
61. Нанася  се на кривата  процентът  на елиминиране  на DOC или ХПК  на 
органичната  среда  в контролния  модул  (D  B ) в зависимост  от времето  
Посочва  се средната  степен  на елиминиране  по същия  начин  както  за 
изпитвания  химикал  (точка  60).  
Признаци  на биоразграждане  
62. Ако изпитваният  химикал  не се адсорбира  в значителна  степен  в 
активната  утайка  и кривата  на елиминирането  има типичната  форма  
на крива  на биоразграждане  с латентна  фаза , фаза  на разграждане  и 
фаза  на плато  (точки  58 и 59), измереното  елиминиране  може  със 
сигурност  да се обясни  с биоразграждане . Ако е налице  силно  
начално  елиминиране , с изпитването  за симулиране  не може  да се 
направи  разграничаване  между  биологични  и абиотични  процеси  на 
елиминиране . В подобни  случаи , а и в други  случаи , в които  има 
съмнение  по отношение  на биоразграждането  (напр . ако е настъпило  
разслояване ), се предприема  анализ  на адсорбираните  изпитвани  
химикали  или се извършва  допълнително  статично  изпитване  за 
биоразграждане  въз основа  на параметри , ясно  свидетелстващи  за 
биологичен  процес . Такива  изпитвания  са методите  за определяне  на 
потреблението  на кислород  (глава  В.4 Г, Д и Е от настоящото  прил­  
ожение  (6) или изпитване  с измерване  на отделянето  на въглероден  
диоксид  (глава  В.4 В от настоящото  приложение  (6) или метод  за 
изпитване  в свободно  пространство  на Международната  организация  
за стандартизация  (ISO) (18), при което  се използва  предварително  
експониран  инокулум  от изпитването  за симулиране . Ако е измерено  
както  елиминирането  на DOC, така и елиминирането  на специфичния  
химикал , наличието  на съществена  разлика  между  процента  на 
елиминиране  (по-нисък  за първото , отколкото  за второто ) показва  
наличието  в изходящите  води  на междинни  органични  продукти , 
чието  биоразграждане  може  да е по-трудно  от това на химикала . 
Валидност  на резултатите  от изпитването  
63. Информация  за обичайното  поведение  на инокулума  по отношение  на 
биоразграждането  може  да се получи , ако се определи  степента  на 
биоразграждане  на органичната  среда  (точка  53) в контролния  модул . 
Изпитването  се приема  за валидно , ако степента  на елиминиране  на 
DOC и ХПК  в контролния  модул (и) е > 80 % след  две седмици  и не 
е наблюдавано  нищо  необичайно . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1073
 
64. Ако е използван  (референтен ) химикал , който  е лесно  биоразградим , 
степента  на биоразграждане  (D  t , точка  52) трябва  да бъде  > 90 %.  
65. Ако изпитването  се провежда  при условия  на нитрификация , средната  
концентрация  в изходящите  води  трябва  да бъде  < 1 mg/l азот от 
амоняк  и < 2 mg/l азот от нитрити . 
66. ако не са изпълнени  тези критерии  (точки  63—65), изпитването  се 
повтаря , като се използва  инокулум  от друг  източник , изпитва  се 
референтен  химикал , и се преразглеждат  всички  експериментални  
процедури . 
Доклад  от изпитването  
67. В доклада  от изпитването  се включва  следното : 
Изпитван  химикал : 
— данни  за идентифициране  на химикала , 
— физична  природа  и, където  е подходящо , физични  и химични  
свойства . 
Условия  на изпитването : 
— тип на изпитвателната  система ; всякакви  изменения  във връзка  с 
изпитване  на неразтворими  и летливи  химикали , 
— тип органична  среда , 
— ако са известни , съотношение  и естество  на промишлените  
отпадъчни  води  в отпадъчните  води , 
— инокулум , естество  и място (места ) на пробовземане , концентрация  
и предварително  третиране , 
— изходен  разтвор  на изпитвания  химикал : съдържание  на DOC и 
ХПК ; ако се касае  за суспензия  — как е приготвена ; концентрация , 
използвана  в изпитването ; причини , ако DOC е извън  обхвата  
10—20 mg/l; метод  на добавяне ; дата на първото  добавяне ; 
промени , 
— средна  възраст  на утайката  и средно  време  на задържане  на 
течността ; метод  за изразходване  на утайката ; методи  за преодо­  
ляване  на набъбването  на утайката , загубите  на утайка  и т.н., 
— използвани  аналитични  методи , 
— температура , при която  се провежда  изпитването , 
— характеристики  на набъбналата  утайка , обемен  индекс  на утайката  
(ОИУ ), твърди  вещества , суспендирани  в смесената  течност  
(ТВССТ ), 
— всякакви  отклонения  от стандартните  процедури  и всякакви  обсто­  
ятелства , които  могат  да окажат  влияние  на резултатите . 
Резултати  от изпитването : 
— всички  данни  от измервания  (DOC, ХПК , специфични  анализи , рН, 
температура , концентрация  на кислород , суспендирани  твърди  
вещества , и азотсъдържащи  химикали , ако е подходящо , 
— всички  изчислени  стойности  на D t (или D tc ), D  B , D St , представени  в 
таблична  форма , и графиките  на елиминирането , 
— информация  за латентната  фаза  и за фазата  на плато , продължит­  
елността  на изпитването , степента  на елиминиране  на изпитвания  
химикал  и тази на органичната  среда  в контролния  модул , а също  и 
статистическа  информация  и декларации  за биоразградимост  и 
валидност  на изпитването , 
— обсъждане  на резултатите . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1074
 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) Swisher RD (1987). „Surfactant Biodegradation“, 2nd Edn. Marcel Dekker 
Inc. New York, 1085 pp.  
(2) German Government (1962). Ordinance of the degradability of detergents 
in washing and cleaning agents. Bundesgesetzblatt, Pt.1 № 49: 698-706.  
(3) Painter HA and King EF (1978a). WRc porous-pot method for assessing 
biodegradability. Technical Report № 70, Water Research Centre, 
Medmenham, UK.  
(4) Painter HA and King EF (1978b). The effect of phosphate and temperature 
on growth of activated sludge and on biodegradation of surfactants. Wat. 
Res. 12: 909-915.  
(5) Eckenfelder, W.W (19) US EPA.  
(6) Глава  В.4 от настоящото  приложение , Определяне  на пряката  
биологична  разградимост . 
(7) Глава  В.12 от настоящото  приложение , Биологично  разграждане  — 
модифицирано  SCAS изпитване . 
(8) Глава  В.19 от настоящото  приложение , Изчисляване  коефициента  на 
адсорбция  (К ос ) на почвата  и на утайката  от отпадни  води  с 
използване  на високоефективна  течна  хроматография  (HPLC).  
(9) Gerike P and Fischer WK (1979). A correlation study of biodegradability 
determinations with various chemicals in various tests. Ecotox. Env. Saf. 
3:157-173.  
(10) Gerike P and Fischer WK (1981), as (9), II Additional results and conclu ­
sions. Ecotox. Env. Saf. 5: 45-55.  
(11) Painter HA and Bealing D (1989). Experience and data from the OECD 
activated sludge simulation test. pp 113-138, In: Laboratory tests for simu ­
lation of water treatment processes. CEC Water Pollution Report 18. Eds. 
Jacobsen BN, Muntau H, Angeletti G.  
(12) ISO 11733 (1995; revised 2004). Evaluation of the elimination and biodeg ­
radability of organic substances in an aqueous medium - activated sludge 
simulation test.  
(13) Birch RR (1982). The biodegradability of alcohol ethoxylates. XIII Jornado 
Com. Espanol. Deterg.: 33-48.  
(14) Birch RR (1984). Biodegradation of noniomic surfactants. J.A.O.C.S. 61 
(2): 340-343.  
(15) Gerike P, Fischer WK and Holtmann W (1980). Biodegradability determi ­
nations in trickling filter units compared with the OECD confirmatory test. 
Wat.Res. 14: 753-758.  
(16) Baumann U, Kuhn G and Benz M. (1998). Einfache Versuchsanordnung 
zur Gewinnung gewässerökologisch relevanter Daten, UWSF - Z. Umwel ­
tchem. Ökotox. 10: 214-220.  
(17) Her Majesty’s Stationery Office (1982). Assessment of biodegradability. 
Methods for the examination of waters and associated materials. pp. 91- 98 ISBN 011 751661 9.
 
(18) ISO 14593 (1998). Water Quality - Evaluation in an aqueous medium of 
the ultimate biodegradability of organic compounds. Method by the 
analysis of inorganic carbon in sealed vessels.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1075
 
Допълнение  1 
Фигура  1 
Оборудване , използвано  за оценка  на биоразградимостта  
Модул  на Husmann
  
А Съд за съхранение  
В Дозираща  помпа  
C Камера  за аериране  (с капацитет  3l) 
D Утаител  Е Въздушна  (ерлифт ) помпа  
F Съд за събиране  
G Аератор  
Н Дебитомер  за въздух  
Фигура  2 
Оборудване , използвано  за оценка  на биологичната  разградимост  
Порест  съд
 
А. Съд за съхранение  
В. Дозираща  помпа  
С. Порест  съд за аериране  
D. Външен  непропусклив  съд Е Съд за събиране  
F Дифузор  
Н Дебитомер  за въздух  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1076
 
Фигура  3 
Подробности  за трилитровия  съд за аериране  с порест  съд
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1077
 
Допълнение  2 
Пример  на крива  на елиминиране
  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1078
 
Допълнение  3 
[ТЕКСТ  ЗА ИНФОРМАЦИЯ ] 
СВЪРЗВАНЕ  НА ИЗПИТВАТЕЛНИТЕ  МОДУЛИ  
За да се уеднакви  микробната  популация  на активната  утайка  в изпитв­  
ателния  модул , в който  се добавят  отпадъчни  води  и изпитваният  
химикал , с тази на контролния  модул , в които  се добавят  само  отпадъчни  
води , се предприема  ежедневен  обмен  на утайка  (1). Процедурата  се нарича  
„свързване “, а методът  е известен  като „свързани  модули “. Свързването  
първоначално  е било  извършено  с използване  на модули  с активна  утайка  
на Husmann, но е било  приложено  и при модулите  с порест  съд (2)(3). Не са 
наблюдавани  значими  разлики  в резултатите  съответно  на свързаните  и на 
несвързаните  модули , независимо  дали  става  дума  за модули  на Husmann 
или модули  с порест  съд, така че няма  полза  от губенето  на времето  и 
енергията , необходими  за свързване  на модулите . 
Обменът  на утайка  може  да създаде  погрешна  представа , че е налице  знач­  
ително  елиминиране , тъй като част от изпитвания  химикал  се пренася  и 
концентрацията  му в изпитвателния  модул  почти  се изравнява  с тази в 
контролния . Поради  това трябва  да се използват  корекционни  коефициенти , 
които  се определят  в зависимост  от частта  на обменената  активна  утайка  и 
от средното  време  на задържане  на течността . Публикувана  е подробна  
допълнителна  информация  за начина  на изчисляване  (1). 
Като  се използва  общата  формула  се пресмятат  коригираните  стойности  на 
елиминиране  на DOC и ХПК . 
D tc ¼ ðD t Ä 100 · a · r=12Þ=ð1 Ä a · r=12Þ% 
където  
D tc = коригираният  процент  на елиминиране  на DOC или ХПК  
D t = определеният  процент  на елиминиране  на DOC или ХПК  
a = обменената  част от обема  на модулите  с активна  утайка  
r = средно  време  на задържане  на течността  (часове ) 
Ако например  е обменена  половината  от обема  на резервоара  за аериране  (а 
= 0,5) и средното  време  на задържане  на течността  е 6 часа, формулата  за 
коригиране  е: 
D tc ¼ 4D t Ä 100 
3 
ПРЕПРАТКИ  
(1) Fischer W, Gerike P, Holtmann W (1975). Biodegradability Determinations 
via Unspecific Analyses (Chemical Oxygen Demand, DOC) in Coupled Units of the OECD Confirmatory Test. I The test. Wat. Res. 9: 1131-1135.
 
(2) Painter HA, Bealing DJ (1989). Experience and Data from the OECD 
Activated Sludge Simulation Test. pp. 113-138. In: Laboratory Tests for 
Simulation of Water Treatment Processes CEC Water Pollution Report 18. Eds. Jacobsen BN, Muntau H, Angeletti G.
 
(3) Painter HA, King EF (1978). Water Research Centre Porous Pot Method for 
Assessing Biodegradability. Technical Report TR70, Water Research Centre, 
Stevenage, UK.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1079
 
Допълнение  4 
ОЦЕНКА  НА ИНХИБИРАНЕТО  НА АКТИВНАТА  УТАЙКА  
Инхибиране , причинено  от изпитваните  химикали  
1. Възможно  е химикал  (или отпадъчни  води ) да не бъде  разграден  или 
елиминиран  при изпитването  за симулиране , или дори  химикалът  да 
има инхибиращо  въздействие  върху  микроорганизмите  на активната  
утайка . Други  химикали  претърпяват  биоразграждане  при ниски  конце­  
нтрации , но оказват  инхибиращо  въздействие  при по-високи  конце­  
нтрации  (хормезис ). Инхибиращото  въздействие  може  да се е 
проявило  на по-ранен  стадий  или може  да се определи , като се 
проведе  изпитване  за токсичност , като се използва  инокулум , подобен  
на използвания  при изпитването  за симулиране , или еднакъв  с него  (1). 
Такива  методи  са инхибирането  на поемането  на кислород  (глава  В.11 
от настоящото  приложение  (2) и ISO 8192(3) или инхибиране  на 
растежа  на организмите  на утайката  (ISO 15522 (4).  
2. При изпитването  за симулиране  инхибирането  ще се прояви  чрез това, 
че по отношение  на разтворения  органичен  въглерод  (DOC) или 
химично  потребния  кислород  (ХПК ) разликата  между  изходящите  
води  от съда  в изпитвателния  модул  и тези от контролния  съд ще 
бъде  по-голяма , отколкото  DOC, добавен  като изпитван  химикал . 
Изразено  по друг  начин , процентът  на елиминиране  на DOC (и биох­  
имично  потребния  кислород  БПК , химично  потребния  кислород  ХПК  
и/или NH  + 4 ) на органичната  среда , подложена  на преработка , ще 
намалее  при наличието  на изпитвания  химикал . Ако това се случи , 
изпитването  се повтаря , като се намалява  концентрацията  на 
изпитвания  химикал , докато  се достигне  ниво , при което  не се 
наблюдава  инхибиране  и евентуално  се продължава  намаляването  на 
концентрацията , докато  изпитваният  химикал  не се биоразгради . Ако 
обаче  изпитваният  химикал  (или отпадъчните  води ) имат  неблаг­  
оприятно  въздействие  върху  процеса  при всички  концентрации  на 
изпитване , това е указание , че биологичната  обработка  на химикала  е 
трудна , ако не и невъзможна , но че може  да е оправдано  изпитването  
да се повтори  с активна  утайка  от друг  източник  и/или активната  
утайка  да се подложи  на по-постепенно  аклиматизиране . 
3. Обратно , ако изпитваният  химикал  претърпи  биоелиминиране  при 
първия  опит  в изпитването  за симулиране , концентрацията  му трябва  
да бъде  увеличена , ако е необходимо  да се знае дали  химикалът  може  
да има инхибиращо  въздействие . 
4. При опитите  за определяне  на степента  на инхибиране , трябва  да се 
помни , че микробната  популация  на активната  утайка  може  да се 
промени , така че с времето  микроорганизмите  могат  да развият  
толерантност  към химикал  с инхибиращо  въздействие . 
5. Изчисляване  на степента  на инхибиране : 
Общият  процент  на елиминиране  R o на БПК , DOC, ХПК  и т.н. за 
изпитвателния  и за контролния  модул  може  да се изчисли  с помощта  
на уравнението : 
R o ¼ 100 ðI Ä EÞ=I % 
където : 
I = концентрация  на БПК , DOC, ХПК  и т.н. във входящи  води  на 
изпитвателния  или контролния  модул  (mg/l)  
E = съответната  концентрация  в изходящи  води  (mg/l).  
I и E трябва  да се коригират  по отношение  на стойността  на DOC, 
поради  изпитвания  химикал  в изпитвателните  модули , защото  в 
противен  случай  изчисленията  на процента  на инхибиране  ще бъдат  
неверни . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1080
 
Степента  на инхибиране , дължаща  се на наличието  на изпитвания  
химикал , може  да се изчисли  чрез уравнението : 
% инхибиране ¼ 100 ðR c Ä R t Þ=R c 
където : 
R c = процент  на елиминиране  в съдовете  на контролния  модул  
R t = процент  на елиминиране  в съдовете  на изпитвателния  модул  
ПРЕПРАТКИ  
(1) Reynolds L  et al . (1987). Evaluation of the toxicity of substances to be 
assessed for biodegradability. Chemosphere 16: 2259.  
(2) Глава  В.11 от настоящото  приложение , Биологично  разграждане  – 
изпитване  за потискане  дишането  на активирана  утайка . 
(3) ISO 8192 (2007) Water quality - Test for inhibition of oxygen consumption 
by activated sludge for carbonaceous and ammonium oxidation.  
(4) ISO 15522 (1999) Water Quality - Determination of the inhibitory effect of 
water constituents on activated sludge microorganisms.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1081
 
Допълнение  5 
Малко  разтворими  във вода  химикали  — летливи  химикали  
Малко  разтворими  във вода  химикали  
Вероятно  не са публикувани  много  доклади  за подлагане  на малко  разт­  
ворими  във вода  и неразтворими  химикали  на изпитвания  за симулиране  на 
обработка  на отпадъчни  води  (1)(2)(3).  
Няма  единствен  метод  за диспергиране  на изпитвания  химикал , който  да се 
прилага  за всички  неразтворими  химикали . Два от четирите  типа  методи , 
описани  в ISO 10634 (4), могат  да се окажат  подходящи  при опитите  за 
диспергиране  на изпитваните  химикали  за изпитване  за симулиране ; това са 
използването  на емулгатори  и/или ултразвук . Трябва  да се определи  стабил­  
ността  на получената  дисперсия  за период  от най-малко  24 часа. В 
резервоара  за аериране  отделно  от битовите  (или синтетичните ) отпадъчни  
води  се дозират  стабилизирани  по подходящ  начин  дисперсии , съхранявани  
в резервоар  с непрекъснато  разбъркване  (точка  38).  
Ако дисперсиите  са стабилни , трябва  да се проучи  как може  да бъде  
определен  изпитваният  химикал , когато  е под формата  на дисперсия . 
Малко  вероятно  е подходящият  метод  да бъде  определянето  на DOC, така 
че трябва  да се намери  специфичен  за изпитвания  химикал  аналитичен  
метод , който  да бъде  приложим  към изходящите  води , твърдите  вещества  
в тях, както  и за активната  утайка . В този случай  трансформацията  на 
изпитвания  химикал  при изпитване  за симулиране  на процеса  с активна  
утайка  се определя  за течната  и твърдата  фаза . Поради  това се определя  
масов  баланс , за да се реши  дали  изпитваният  химикал  е претърпял  
биоразграждане . По този начин  обаче  се определя  само  първичното  
биоразграждане . Трябва  да се направи  опит  за определяне  на крайното  
биоразграждане , като се извърши  изпитване  за лесна  биоразградимост  с 
помощта  на респирометър  (глава  В.4 от настоящото  приложение  (5) В, Е 
или Г), като се използва  инокулум  от утайка , изложена  на изпитвания  
химикал  в изпитването  за симулиране . 
Летливи  химикали  
Прилагането  на изпитвания  за симулиране  на третирането  на отпадъчните  
води  към летливите  химикали  е както  спорно , така и проблемно . Както  и за 
малко  разтворимите  изпитвани  химикали , публикувани  са много  малко  
доклади , които  описват  изпитвания  за симулиране , при които  се 
използват  летливи  химикали . Чрез  херметично  затваряне  на резервоара  за 
аериране  и утаителя  се приспособява  конвенционален  апарат  с пълно  
смесване , с помощта  на дебитометри  се измерва  и контролира  потокът  
въздух , а изходящите  газове  се прекарват  през уловители , за да се 
съберат  летливите  органични  вещества . В някои  случаи  се използва  
вакуумна  помпа , за да се отведе  изходящият  газ през уловител  за пари , 
съдържащ  Tenax и силикагел , с цел провеждане  на газово -хроматографски  
анализи . Изпитваният  химикал , наличен  в уловителя , може  да бъде  
определен  аналитично . 
Изпитването  се провежда  в две части . Първоначално  модулите  функц­  
ионират  без утайка , но в резервоара  за аериране  се подават  с помпа  синт­  
етичните  отпадъчни  води  с изпитвания  химикал . В продължение  на няколко  
дни се събират  и анализират  за изпитвания  химикал  проби  от входящите  
води , изходящите  води  и изходящия  газ. От получените  данни  може  да се 
изчисли  процентът  (R vs ) на изпитвания  химикал , изведен  от системата . 
След  това се извършва  обикновено  биологично  изпитване  (с утайка ) при 
условия , които  са еднакви  с тези при изпитването  за извеждане . Правят  се 
също  и измервания  на DOC и ХПК , за да се провери  дали  модулите  работят  
ефикасно . От време  на време  през първата  част на изпитването  се правят  и 
анализи  за определяне  на изпитвания  химикал  във входящите  и изходящите  
води , а също  и в изходящия  газ; след  аклиматизиране  на утайката  анализите  
се правят  по- често . Както  и преди , въз основа  на данните , получени  във 
фазата  на стабилизиране , може  да се изчисли  процентът  на елиминиране  на 
изпитвания  химикал  чрез всички  процеси  (R  T ) (физични  и биологични ) от 
течната  фаза , както  и делът  (R V ), изведен  от системата . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1082
 
Изчисление : 
а) При небиологично  изпитване  процентът  (R  VP ) от изпитвания  материал , 
изведен  от системата , може  да се изчисли  с помощта  на израза : 
R VP ¼ S VP 
S IP · 100 
където  
R VP = елиминиране  на изпитвания  химикал , дължащо  се на изпаряване  
(в %), 
S VP = изпитван  химикал , събран  в уловителя , изразен  като еквивалентна  
концентрация  в течна  фаза  (mg/l),  
S IP = концентрация  на изпитвания  химикал  във входящите  води  (mg/l).  
б) При биологично  изпитване  процентът  (R  V ) от изпитвания  материал , 
изведен  от системата , може  да се изчисли  с помощта  на израза : 
R V ¼ S V 
S I · 100 
където  
R V = елиминиране  на изпитвания  химикал , дължащо  се на изпаряване  
при биологичното  изпитване  (в %), 
S V = изпитван  химикал , събран  в уловителя  при биологично  
изпитване , изразен  като еквивалентна  концентрация  във 
входящите  води  (mg/l),  
S I = концентрация  на изпитвания  химикал  във входящите  води  (mg/l).  
в) В биологичните  изпитвания  процентът  (R  T ) от изпитвания  химикал , 
изведен  чрез всички  процеси , се дава от: 
R T ¼ 1 Ä S E 
S I · 100 
където  
S E = концентрация  на изпитвания  химикал  в изходящите  (течни ) 
флуиди  (mg/l).  
г) Процентът  (R  BA ) изведени  чрез биоразграждане  и адсорбция  химикали  
може  да се изчисли  с помощта  на израза : 
R BA ¼ ðR T Ä R V Þ 
Трябва  да се проведат  отделни  изпитвания  за определяне  дали  
изпитваният  химикал  е адсорбиран ; ако това е така, може  да се 
направи  допълнителна  корекция . 
д) Сравнението  между  дела  на изпитвания  химикал , изведен  съответно  от 
биологичните  (R v ) и небиологичните  (R vp ) системи  за изпитване , показва  
общото  въздействие , което  биологичната  преработка  е оказала  върху  
емисиите  на изпитвания  химикал  в атмосферата . 
Пример : Бензен  
Време  на задържане  на утайката  = 4 дни 
Синтетични  отпадъчни  води ; време  на задържане  = 8 h  
S IP = S  I = 150 mg/l  
S VP = 150 mg/l (S  EP = 0) 
S V = 22,5 mg/l  
S E = 50 μg/l ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1083
 
Следователно : 
R VP = 100 %, R  V = 15 %  
R T = 100 % и R BA = 85 %.  
Беше  прието , че бензенът  не се адсорбира  от утайката . 
ПРЕПРАТКИ  
(1) Horn JA, Moyer JE, Hale JH (1970). Biological degradation of tertiary butyl 
alcohol. Proc. 25th Ind. Wastes Conference Purdue Univ.: 939-854.  
(2) Pitter P, Chudoba J (1990). Biodegradability of organic substances in the 
aquatic environment. CRC Press. Boston, USA.  
(3) Stover EL, Kincannon DF (1983). Biological treatability of specific organic 
compounds found in chemical industry waste waters. J. Wat. Pollut. Control Fed. 55: 97.
 
(4) ISO 10634 (1995) Water Quality - Guidance for the preparation and 
treatment of poorly water-soluble organic compounds for the subsequent 
evaluation of their biodegradability in an aqueous medium.  
(5) Глава  В.4 от настоящото  приложение  (Определяне  на пряката  
биологична  разградимост ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1084
 
Допълнение  6 
Въздействие  на времето  на задържане  на утайката  върху  
възможността  за третиране  на химикалите  
УВОД  
1. Описаният  в основния  текст  метод  беше  разработен , за да се провери  
дали  изпитваните  химикали  (онези , за които  е известно , че са присъщо  
биоразградими , но не и пълно  биоразградими ), могат  да бъдат  
биоразградени  в границите , наложени  в станциите  за пречистване  на 
отпадъчни  води . Резултатите  са изразени  като процент  на 
елиминирането  и биоразграждането . Условията  на работа  на модулите  
с активна  утайка  и изборът  на входящи  води  позволяват  колебания  в 
доста  широки  граници  на концентрацията  на изпитвания  химикал  в 
изходящите  води . Изпитванията  се провеждат  само  при една  
номинална  концентрация  на твърдите  частици  в утайката  или една  
стойност  на номиналното  време  на задържане  на утайката  (ВЗК), и 
описаните  режими  на изразходване  на утайката  могат  да доведат  до 
значителни  колебания  на ВЗК по време  на изпитването  в два последов­  
ателни  дни, но също  и в рамките  на един  ден. 
2. В този вариант  (1)(2) ВЗК се поддържа  в много  по-тесни  граници  в 
рамките  на всеки  24-часов  период  (както  се прави  в по-голям  мащаб ), 
което  води  до по-постоянна  концентрация  на изходящите  води . 
Препоръчва  се използването  на битови  отпадъчни  води , тъй като с 
тях се получават  по-постоянни  и по-високи  стойности  на процента  на 
елиминиране . Освен  това, изследва  се въздействието  на много  
стойности  на ВЗК, а в по-подробно  изследване  може  да се определи  
въздействието  на температурен  обхват  върху  концентрацията  на 
изходящите  води . 
3. Все още няма  консенсус  кои са работещите  кинетични  модели , когато  
химикалите  претърпяват  биоразграждане  в условията  на пречистване  на 
отпадъчни  води . Бе избрано  (1) (2) върху  събраните  данни  да се 
приложи  моделът  на Моно  за бактериалния  растеж  и използването  на 
субстрата , тъй като методът  е предназначен  да се използва  само  спрямо  
химикали , произвеждани  в промишлени  количества , които  поради  това 
присъстват  в отпадъчните  води  с концентрация  от над 1 mg/l. Валид­  
ността  на опростения  модел  и направените  допускания  беше  
определена  с помощта  на етоксилати  на алкохоли , които  имат  
различна  степен  на първична  биоразградимост  (2) (3).  
Забележка : Настоящият  вариант  в голяма  степен  повтаря  текста , 
описващ  настоящия  метод  за изпитване  В.10-А, и само  
подробностите , които  са различни , са посочени  по-долу . 
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
4. Модулите  с активна  утайка  с порест  съд, разработени  за улесняване  на 
(почти ) непрекъснатото  изразходване  на смесената  течност , позво­  
ляващо  много  точен  контрол  на времето  на задържане  на утайката  
(ВЗК, или θ s ), се поставят  да функционират  в режим  на несвързани  
модули  при набор  от стойности  на ВЗК, и по избор  — при набор  от 
стойности  на температурата . Времето  на задържане  на утайката  е обик­  
новено  между  2 и 10 дни, а температурата  — между  5 и 20 °С. 
Отпадъчни  води , за предпочитане  битови , и разтвор  на изпитвания  
химикал  се дозират  поотделно  в модулите  с дебит , който  да осигури  
изисканото  време  на задържане  на утайката  (3 до 6 часа) и изисканата  
концентрация  на изпитвания  химикал  във входящите  води . За 
сравнение  успоредно  се задействат  контролните  модули , в които  не 
се добавя  от изпитвания  химикал . 
5. Могат  да се използват  и други  типове  апарати , но трябва  особено  да се 
внимава  да се осигури  точен  контрол  на ВЗК. Например , когато  се 
използват  станции , снабдени  с утаител , може  да е необходимо  да се 
държи  сметка  за загубата  на твърди  вещества  с изходящите  води . Освен  
това, трябва  да се вземат  и специални  предпазни  мерки  да се избягват  
грешки  поради  колебанията  на количеството  утайка  в утаителя . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1085
 
6. Модулите  се оставят  да функционират  при всеки  от избраните  набори  
условия  и след  достигане  на равновесие  в продължение  на три седмици  
се вземат  средните  стойности  на концентрацията  в изходящите  води  на 
изпитвания  химикал , и по избор , на DOC. Освен  оценка  на процента  на 
елиминиране  на изпитвания  химикал  и, по избор , на DOC, в графична  
форма  се изразява  и зависимостта  между  условията  на функциониране  
на станцията  и концентрацията  в изходящите  води . Въз основана  тази 
информация  може  да се пресметнат  опитни  кинетични  константи  и да 
се предскажат  условията , при които  може  да се третира  изпитваният  
химикал . 
ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНИЯ  ХИМИКАЛ  
7. Прилага  се глава  В.10-А, точки  12 и 13. 
ПРАГОВИ  НИВА  
8. Прилага  се глава  В.10-А, точки  14 и 15. 
РЕФЕРЕНТЕН  ИЗПИТВАН  ХИМИКАЛ  
9. Прилага  се глава  В.10-А, точка  16. 
ВЪЗПРОИЗВОДИМОСТ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  ОТ ИЗПИТВАНИЯТА  
10. Прилага  се глава  В.10-А, точки  17 и 18. 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Апаратура  
11. Подходящ  модул  е изменената  система  с порест  съд (допълнение  6.1). 
Той се състои  от вътрешен  съд (или облицовка ), изработен  от порест  
полипропилен  с дебелина  3,2 mm и размер  на порите  приблизително  
90 μm и дебелина  2 mm, с челно  заварен  шев. (Така  се получава  модул , 
който  е по-здрав  от описания  в точка  21 от настоящата  глава  В.10-А). 
Порестият  съд е монтиран  в непропусклив  външен  съд от полиетилен , 
състоящ  се от две части : кръгла  основа , в която  са пробити  отвори , 
през които  минават  две тръби  за въздух  и тръба  за отвеждане  на 
изразходваната  утайка , и горен  цилиндър , завинтен  върху  основата , 
който  има изходен  отвор , разположен  така, че да налива  известен  
обем  (3 l) в контейнера  на порестия  съд. една  от тръбите  за въздух  е 
снабдена  с дифузор  от порест  камък , а другата  е отворена  и обърната  
под прав  ъгъл  към камъка  в съда . Тази  система  предизвиква  достатъчно  
турбулентност , така че да се гарантира , че съдържанието  на съда  е 
напълно  размесено , а също  осигурява  по-висока  от 2 mg/l концентрация  
на разтворения  кислород . 
12. Подходящият  брой  модули  се поддържат  при контролирана  
температура  в интервала  5—20 ° С (± 1 °С) във водна  баня  или в 
помещения  с постоянна  температура . Необходими  са помпи , които  да 
дозират  разтвора  на изпитвания  химикал  и утаените  отпадъчни  води  
при изисквания  дебит  (съответно  0—0,1 ml/min и 0-25 ml/min), както  и 
трета  помпа , която  да изпомпва  изразходваната  утайка  от съдовете  за 
аериране . Необходимият  много  слаб  дебит  на изразходваната  утайка  се 
постига  с използване  на помпа , която  работи  при по-висок  дебит , и се 
включва  периодично  с помощта  на таймер -превключвател , например  
като работи  10 секунди  на минута  с дебит  от 3 ml/min, помпата  
осигурява  дебит  на изразходваната  утайка  от 0,5 ml/min.  
Апарат  за филтруване  или центрофуга  
13. Прилага  се глава  В.10-А, точка  23. 
Аналитично  оборудване  
14. Прилага  се глава  В.10-А, точка  24. 
Води  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1086
 
15. Прилага  се глава  В.10-А, точки  25 и 26. 
Органична  среда  
16. Прилага  се глава  В.10-А, точка  27. 
Синтетични  отпадъчни  води  
17. Прилага  се глава  В.10-А, точка  28. 
Битови  отпадъчни  води  
18. Прилага  се глава  В.10-А, точка  29. 
Активна  утайка  
19. Прилага  се глава  В.10-А, точка  30. 
Изходни  разтвори  на изпитвани  вещества  
20. Прилага  се глава  В.10-А, точки  31 и 32. 
ПРОЦЕДУРА  
Приготвяне  на инокулум  
21. Прилага  се само  глава  В.10-А, точка  34 — използва  се само  активна  
утайка  (около  2,5 g/l).  
Брой  изпитвателни  модули  
22. За обикновено  изпитване , т.е., такова , с което  се цели  да се определи  
процентът  на елиминиране , е достатъчно  определянето  на едно  ВЗК, но 
за да съберат  данни  за изчисляване  на опитни  кинетични  константи , са 
необходими  4 или 5 стойности  на ВЗК. Обикновено  се избират  
стойности  между  2 и 10 дни. На практика  подходящо  е да се 
извършва  изпитване , като едновременно  се приложат  4 или 5 
стойности  на ВЗК при една  и съща  температура ; в по-разширени  
изследвания  се използват  същите  стойности  на ВЗК, като са 
възможни  и стойности  от друг  обхват , при други  температури  в 
обхвата  5—20 °С. За първичното  биоразграждане  (основно  използване ) 
обикновено  се изисква  само  един  модул  за набор  от условия . За 
определяне  обаче  на крайното  биоразграждане , за всяка  комбинация  
от условия  се изисква  контролен  модул , зареждан  с отпадъчни  води , 
но не и с изпитвания  химикал . Ако се смята , че изпитваният  химикал  е 
наличен  в използваните  отпадъчни  води , необходимо  е да се използва  
контролен  модул  при определянето  на първичното  биоразграждане , 
както  и да се направят  необходимите  корекции  в изчисленията . 
Добавяне  на органичната  среда  и изпитвания  химикал  
23. Прилага  се глава  В.10-А, точки  36—39, но е важно  да се подчертае , че 
разтворът  на изпитвания  химикал  се дозира  отделно  и че се използват  
различни  скорости  на изразходване  на утайката . Често , т.е. два пъти  на 
ден, се проверява  дебитът  на входящите  води , изходящите  води  и 
изразходването  на утайка  и, ако е необходимо , се коригира  с оглед  
колебания  в рамките  на ± 10 %. Ако при използване  на битови  
отпадъчни  води  се появят  трудности  по отношение  на аналитичните  
методи , изпитването  се провежда  със синтетични  отпадъчни  води , но 
трябва  да се вземат  мерки  различните  среди  да дават  съпоставими  
резултати  по отношение  на кинетиката . 
Работа  с модулите  с активна  утайка  
24. Прилага  се глава  В.10-А, точки  40—43, но ВЗК се контролира  само  
чрез „постоянно “ изразходване  на утайката . 
Проби  и анализ  
25. Прилага  се глава  В.10-А, точки  44—50, с изключение  на това, че 
трябва  да се определи  концентрацията  на изпитваните  химикали , а 
определянето  на DOC е по избор . Не се използва  ХПК . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1087
 
ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Обработка  на резултатите  
26. Прилага  се глава  В.10-А, точки  52—54.  
Изразяване  на резултатите  от изпитването  
27. Прилага  се глава  В.10-А, точки  56—62.  
Изчисляване  на кинетични  константи  
28. По-реалистично  е да се посочи  средната  концентрация  на изпитвания  
химикал  в изходящите  води  при постигнато  стационарно  състояние  и 
да се опише  как тя се променя  в зависимост  от условията  на работа  на 
съоръженията , отколкото  да се посочи  процентът  на първично  
биоразграждане . За целта  се използва  уравнение  (6) в допълнение  6.2, 
от което  се получават  стойностите  на K S , μ m и θ SC — критичното  време  
на задържане  на утайката . 
(Като  алтернатива , приблизителните  стойности  на K S и μ m могат  да се 
получат  с използване  на проста  компютърна  програма , която  нагажда  
теоретичната  крива , изчислена  с помощта  на уравнение  2 (допълнение  
6.2), към получените  експериментални  данни . Въпреки  че никое  
получено  решение  не е единствено  възможното , може  да се получи  
разумно  приближение  за K S и μ m .) 
Вариране  на резултатите  
29. Често  за един  и същ химикал  се получават  променливи  стойности  за 
кинетичните  параметри . Смята  се, че условията , при които  е протекъл  
растежът  на утайката , както  и условията , в които  е проведено  
изпитването  (както  в точка  5 и в други  изпитвания ), имат  силно  
влияние  върху  получаваните  резултати . Един  от аспектите  на 
посоченото  вариране  е разгледан  от Grady et al (4), които  предложиха  
термините  „действителен “ и „присъщ “ да се използват  за двете  крайни  
условия , представляващи  границите  на физиологичните  състояния , 
които  дадена  култура  може  да приеме  по време  на експеримент  за 
определяне  на кинетиката . Ако състоянието  не може  да се променя  
по време  на експеримента , стойностите  на кинетичните  параметри  
отразяват  условията  в средата , от която  са взети  микроорганизмите . 
такива  стойности  се наричат  „действителни “ или съществуващи  към 
дадения  момент . Обратно , ако условията  на изпитването  позволяват  
цялостно  развитие  на системата  за синтез  на белтък , която  позволява  
максимално  възможната  скорост  на растеж , получените  кинетични  
параметри  се наричат  „присъщи “, и зависят  само  от естеството  на 
субстрата  и от типовете  на бактериите  в културата . Като  насока , 
действителните  стойности  се получават  като съотношението  на конце­  
нтрацията  на субстрата  към разграждащите  микроорганизми  (S o /X o ) се 
поддържа  ниско , напр . 0,025, а присъщите  стойности  се появяват , 
когато  съотношението  е високо , напр . най-малко  20. И в двата  случая  
S o трябва  да е равна  на съответната  стойност  на константата  на полун­  
асищане  Ks или да е по-висока  от нея. 
30. Варирането  на резултатите  и други  аспекти  на кинетиката  на 
биоразграждането  бяха  обсъдени  неотдавна  на работна  среща  на 
SETAC (5). Посочените  изследвания , публикувани  или в стадий  на 
проект , имат  потенциала  да доведат  до по-ясно  разбиране  на 
кинетиката  на реакциите , протичащи  в станциите  за пречистване  на 
отпадъчни  води , да позволят  наличните  данни  да бъдат  тълкувани  по- 
задълбочено , а също  и да дадат  идеи  за по-нататъшно  развитие  на 
методите  на изпитване . 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) Birch RR (1982). The biodegradability of alcohol ethoxylates. XIII Jornado 
Com. Espanol Deterg.: 33-48.  
(2) Birch RR (1984). Biodegradation of nonionic surfactants. J.A.O.C.S., 61(2): 
340-343.  
(3) Birch RR (1991). Prediction of the fate of detergent chemicals during sewage 
treatment. J. Chem. Tech. Biotechnol., 50: 411-422.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1088
 
(4) Grady CPL, Smets BF and Barbeau DS (1996). Variability in kinetic 
parameter estimates: A review of possible causes and a proposed termi ­
nology. Wat. Res., 30 (3): 742-748.  
(5) Biodegradation kinetics: Generation and use of data for regulatory decision 
making (1997). Workshop at Port Sunlight, UK. Eds. Hales SG, Feitjel T, King H, Fox K, Verstraete W. 4-6th Sept. 1996. SETAC- Europe, Brussels.
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1089
 
Допълнение  6.1 
Порест  съд с контрол  на ВЗК
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1090
 
Допълнение  6.2 
Изчисляване  на кинетични  константи  
1. Като  се допусне , че е приложим  кинетичният  модел  на Моно  и като се 
разгледа  масовият  баланс  на активните  твърди  вещества  и на субстрата  
в системата  с активна  утайка  (1), за постигане  на стационарно  
състояние  се получават  следните  изрази : 
1 
θ s ¼ μ m · S 1 
K s þ S 1 Ä K d [1] 
или 
S 1 ¼ K s · ð1 þ K d · θ s Þ 
θ s · ðμ m Ä K d Þ Ä 1 [2] 
където  
S 1 = концентрация  на субстрата  в изходящите  води  (mg/l).  
K S = константата  на полунасищане , концентрацията , при която  μ = 
μ m /2 (mg/l)  
μ = специфична  скорост  на растеж  (d –1 ) 
μ m = максимална  стойност  на μ m (d –1 ) 
K d = специфична  скорост  на разграждане  на активните  твърди  
вещества  (d –1 ) 
θ S = средно  време  на задържане  на утайката  (d) 
Разглеждането  на това уравнение  води  до следните  заключения : 
i) Концентрацията  на изходящите  води  е независима  от тази на 
входящите  води  (S  0 ); така, процентът  на биоразграждане  се 
изменя  в зависимост  от концентрацията  на входящите  води  (S  0 ). 
ii) Единственият  параметър  за контрол  на пречиствателната  станция , 
който  влияе  на S 1 , е времето  на задържане  на утайката  θ S . 
iii) За дадена  концентрация  S 0 на входящите  води  има критично  време  
на задържане  на утайката , такова  че: 
1 
θ SC ¼ μ s · S 0 
K s þ S 0 Ä K d [3] 
където  
θ SC = критично  време  на задържане  на утайката , под което  
разграждащите  микроорганизми  ще бъдат  отмити  от 
станцията . 
iv) Тъй като другите  параметри  в уравнение  (2) са свързани  с 
кинетиката  на растежа , очаква  се температурата  да влияе  на конце­  
нтрацията  на субстрат  в изходящите  води  и определящата  възраст  
на утайката , т.е., времето  на задържане  на утайката , необходимо  за 
получаване  на определена  степен  на преработка , ще се увеличи  при 
намаляване  на температурата . 
2. Като  се изхожда  от тегловния  баланс  на твърдите  вещества  в системата  
с порест  съд, и като се допусне , че концентрацията  Х 2 на твърдите  
вещества  в изходящите  води  на станцията  е ниска  в сравнение  с тази 
в съда  за аериране  Х 1 , времето  на задържане  на утайката  
θ s ¼ V · X 1 
ðQ 0 Ä Q 1 Þ · X 2 þ Q 1 · X 1 [4] ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1091
 
и 
θ s ¼ V · X 1 
Q 1 · X 1 ¼ V 
Q 1 
където  
V = обем  на съда  за аериране  (l) 
X 1 = концентрация  на твърди  вещества  в съда  за аериране  (mg/l).  
X 2 = концентрация  на твърди  вещества  в изходящите  води  (mg/l)  
Q 0 = дебит  на входящите  води  (l/d)  
Q 1 = дебит  на изразходваната  утайка  (l/d)  
Поради  това е възможно  да се контролира  времето  на задържане  на 
утайката  и то да се поддържа  на предварително  определена  стойност  
чрез контрол  на дебита  на изразходвана  утайка  Q 1 . 
Заключения  
3. Основната  цел на изпитването  е следователно  да се направи  възможно  
да се предсказва  концентрацията  на изходящите  води , а чрез нея и 
нивата  на изпитвания  химикал  в приемащите  води . 
4. Като  се нанесат  стойностите  на S 1 в зависимост  от θ S , в редица  случаи  
може  бързо  да се оцени  критичното  време  на задържане  на утайката  
θ SC , напр . крива  3 на фигура  1. Когато  това не е възможно , θ SC може  да 
се изчисли , както  и приблизителните  стойности  на μ m и K S , като се 
нанесат  стойностите  на S 1 , в зависимост  от S 1 ·θ S . 
Новата  формулировка  на уравнение  [1] дава: 
S 1 · θ s 
1 þ θ s · K d ¼ K s 
μ m þ S 1 
μ m [5] 
Ако K d е малко , 1 + θ s · K d ~ 1 и [5] приема  вида : 
S 1 · θ s ¼ K s 
μ m þ S 1 
μ m [6] 
По този начин  графиката  трябва  да е права  линия  (вж. фигура  2) с 
наклон  1/μ m и да пресича  K S /μ m ; а също  θ S ~1/μ m . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1092
 
Фигура  1 
Три температури ; пет ВЗК
  
Фигура  2 
Регресионна  линия  на ВЗК  · S 1 по отношение  на S 1 при T = 5 °C
  
Речник : 
Концентрация  на изходящи  води : 
Крива : ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1093
 
Допълнение  7 
ИЗПИТВАНЕ  ПРИ  НИСКА  (μg/l) КОНЦЕНТРАЦИЯ  
1. Нормалното  съдържание  на много  химикали  във водна  среда , дори  в 
отпадъчните  води , е много  ниско  (μg/l). При такава  концентрация  те 
най-вероятно  не служат  за първични  субстрати , които  предизвикват  
растеж , и може  да се предположи  по-скоро , че те се разграждат  като 
непредизвикващи  растеж  вторични  субстрати , наред  с други  естествени  
химикали , съдържащи  въглерод . Следователно , разграждането  на 
подобни  химикали  не протича  според  модела , описан  в допълнение  
6. Съществуват  много  модели , които  биха  могли  да се приложат , и 
при условията  на функциониране  на системите  за преработка  на 
отпадъчни  води  е възможно  едновременно  да функционират  два и 
повече  модели . За изясняване  на проблема  са необходими  много  по- 
задълбочени  изследвания . 
2. Междувременно  може  да се следва  процедурата , описана  в основния  
текст  (глава  В.10-А), но само  що се касае  до първичната  
биоразградимост , като се използват  подходящо  ниски  концентрации  
(< 100 μg/l) и валидирана  аналитична  процедура . Процентът  на 
биоразграждане  може  да се пресметне  (вж. точка  54 от метода  за 
изпитване ), при условие  че се отчетат  абиотичните  процеси  (адсорбция , 
летливост  и т.н.). Пример  за такова  пресмятане  е изследването  на 
Nyholm и неговите  сътрудници  (1) (2), при което  е използван  цикъл  
с продължителност  4 часа в система  с пълнене  и изпомпване . Те 
съобщават  за константи  от псевдо -първи  порядък  за 5 химикала , 
добавени  към синтетични  отпадъчни  води  в концентрация  от 5 до 
100 μg/l. (за оценка  на крайното  биоразграждане  могат  да се 
използват  белязани  с 14 C химикали  за изпитване . Описанието  на 
подобен  метод  излиза  извън  обхвата  на настоящия  метод  за изпитване , 
тъй като все още няма  приети  процедури , въпреки  че съществува  
метод , предложен  за ISO 14592 (3), който  съдържа  насоки  за 
използването  на химикали , белязани  с 14 C. 
Полунепрекъснато  изпитване  с активна  утайка  
3. По-късно  беше  предложено  по-просто  изпитване  от два етапа ; след  
метода  на полунепрекъснатото  изпитване  с активна  утайка  (ПИАУ ) 
се прилагат  краткосрочни  кинетични  изпитвания  върху  проби , взети  
от модулите  за провеждане  на ПИАУ . Системата  ПИАУ  работи  с 
известна  скорост  на изразходване  на утайката  (за разлика  от 
оригиналния  метод  В.12) и се захранва  с изменени  синтетични  
отпадъчни  води  по рецептурата  на ОИСР  или с битови  отпадъчни  
води . Синтетичните  отпадъчни  води  са с променен  състав  (поради  
променящата  се стойност  на рН и лошата  утаимост  на утайката ) чрез 
добавяне  на фосфат  в качеството  на буфер , екстракт  от мая, 
железен (III) хлорид  и соли  на микроелементи , а техният  DOC е 
увеличен  на около  750 mg/l чрез увеличаване  на концентрацията  на 
пептон  и месен  екстракт . Модулите  функционират  с 24-часов  цикъл : 
аериране  23 часа, изваждане  на утайката , утаяване , изпомпване  на 
супернатанта  (изходящите  води ), след  което  следва  добавяне  на синт­  
етични  отпадъчни  води  и изпитван  химикал  до концентрация  100 μg/l 
(т.е. приблизително  до същата  концентрация , която  се използва  в крат­  
косрочното  изпитване ). веднъж  седмично  10 % от общото  количество  
утайка  се заменя  с прясна  утайка  с цел поддържане  на балансирана  
микробна  популация . 
4. В началото  и в края  на аерирането  се измерва  концентрацията  на 
изпитвания  химикал  и изпитването  продължава , докато  се постигне  
окончателно  елиминиране  на изпитвания  химикал ; процесът  
продължава  от една  седмица  до няколко  месеца . 
Краткосрочно  изпитване  
5. Извършва  се кратко  изпитване  (напр . 8 часа) с цел определяне  на 
скоростната  константа  от (псевдо )първи  порядък  на разграждането  на 
изпитвания  химикал  в активна  утайка  с известни , но различни  
произход  и история . По-специално , пробите  активна  утайка  са взети  
от реакторите  за ПИАУ  — след  края  на периода  на аериране , когато  
концентрация  на органичен  субстрат  е ниска  — по време  на 
експеримента  за аклиматизиране  (точки  3 и 4). Кал може  да се вземе  
и от едновременно  действащ  модул  за ПИАУ , в който  не е добавен  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1094
 
изпитваният  химикал . Смесите  от утайка  и изпитван  химикал , добавени  
в две или повече  концентрации  в интервала  1—50 μg/l, се аерират  без 
да се добавят  синтетични  отпадъчни  води  или друг  органичен  субстрат . 
Изпитваният  химикал , който  остава  разтворен , се определя  на равни  
интервали , напр . на всеки  час, в зависимост  от разградимостта  на 
химикала , в течение  на период , не по-дълъг  от 24 часа. Пробите  се 
центрофугират  преди , да се подложат  на съответния  анализ . 
Изчисления  
6. Данните  от модулите  за ПИАУ  се използват  за пресмятане  на процента  
на елиминиране  на изпитвания  химикал  (точка  54) освен  това, с 
помощта  на долното  уравнение  може  да се изчисли  константата  за 
средна  скорост  К 1 (нормализирана  по отношение  на концентрация  на 
твърди  вещества  в суспензия ): 
K 1 ¼ 1=t · ln C e 
C i · 1=SSð1=g hÞ 
където  
t = време  на аериране  (23 часа) 
C e = концентрация  в края  на аерирането  (μg/l) 
C i = концентрация  в началото  на аерирането  (μg/l) 
SS = концентрация  на твърдите  вещества  в активна  утайка . 
7. При краткосрочното  изпитване  се начертава  кривата  на логаритъма  на 
остатъчната  концентрация  (%) в зависимост  от времето , а наклонът  на 
началната  част (10—50 % от разграждането ) на кривата  е еквивалентен  
на К 1 , константата  от (псевдо )първи  порядък . Константата  се 
нормализира  по отношение  на концентрацията  на твърдите  вещества  
в утайката , като се раздели  наклонът  на концентрацията  на твърдите  
вещества  в утайката . При докладването  на резултата  трябва  да се 
включат  и данни  за началната  концентрация  на изпитвания  химикал  
и твърдите  вещества , времето  на задържане  на утайката , зареждането  
и източника  на утайката , както  и информация  за предварителната  
експозиция  (ако има такава ) на изпитвания  химикал . 
Вариране  на резултатите  
8. Варирането  на резултатите  и други  аспекти  на кинетиката  на 
биоразграждането  бяха  обсъдени  неотдавна  на работна  среща  на 
SETAC (7). Посочените  изследвания , публикувани  или в стадий  на 
проект , имат  потенциала  да доведат  до по-ясно  разбиране  на 
кинетиката  на реакциите , протичащи  в станциите  за пречистване  на 
отпадъчни  води , да позволят  наличните  данни  да бъдат  тълкувани  по- 
задълбочено , а също  и да дадат  идеи  за по-нататъшно  развитие  на 
методите  на изпитване . 
ПРЕПРАТКИ  
(1) Nyholm N, Jacobsen BN, Pedersen BM, Poulsen O, Dambourg A and 
Schultz B (1992). Removal of micropollutants in laboratory activated 
sludge reactors. Biodegradability. Wat. Res. 26: 339-353.  
(2) Jacobsen BN, Nyholm N, Pedersen BM, Poulsen O, and Ostfeldt P (1993). 
Removal of organic micropollutants in laboratory activated sludge reactors under various operating conditions: Sorption. Wat. Res. 27: 1505-1510.
 
(3) ISO 14592 (ISO/TC 147/ SC5/ WG4, N264) (1998). Water Quality - 
Evaluation of the aerobic biodegradability of organic compounds at low 
concentrations in water.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1095
 
(4) Nyholm N, Ingerslev F, Berg UT, Pedersen JP and Frimer-Larsen H (1996). 
Estimation of kinetic rate constants for biodegradation of chemicals in 
activated sludge waste water treatment plants using short-term batch expe ­
riments and μg/l range spiked concentrations Chemosphere 33 (5): 851-864.  
(5) Berg UT and Nyholm N (1996). Biodegradability simulation Studies in 
semi-continuous activated sludge reactors with low ( μg/l range) and 
standard (ppm range) chemical concentrations. Chemosphere 33 (4): 711- 
735. 
(6) Danish Environmental Protection Agency. (1996). Activated sludge biodeg ­
radability simulation test. Environmental Project, № 337. Nyholm, N. Berg, 
UT. Ingerslev, F. Min. of Env. and Energy, Copenhagen.  
(7) Biodegradation kinetics: Generation and use of data for regulatory decision 
making (1997). Workshop at Port Sunlight, UK. Eds. Hales, SG. Feitjel, T. King, H. Fox, K. and Verstraete, W. 4-6
 th Sept. 1996. SETAC- Europe, 
Brussels.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1096
 
B.10-Б: Биофилми  
УВОД  
1. Изпитванията  за симулиране  обикновено  се прилагат  по отношение  на 
химикали , които  не са преминали  пресяващите  изпитвания  за лесна  
биоразградимост  (глава  В.4 А до Е от настоящото  приложение  (9), 
но които  са преминали  изпитванията  за присъща  биоразградимост . 
По изключение  изпитвания  за симулиране  се прилагат  също  и за 
всеки  химикал , за който  се изисква  повече  информация , по-специално  
за произвеждани  в големи  количества  химикали , като обикновено  се 
прилага  изпитване  с активна  утайка  (В.10-А). При някои  обстоятелства  
обаче  се изисква  специфична  информация  за поведението  на даден  
химикал  по отношение  на методите  за пречистване  на отпадъчни  
води  с помощта  на биофилми , а по-точно  капещи  биофилтри , 
въртящи  се биологични  дискове , съоръжения  с кипящ  слой . За 
решаване  на тази задача  са създадени  разнообразни  устройства . 
2. Gerike  et al . (1) прибягват  до големи  капещи  биофилтри  в пилотен  
мащаб , които  те използват  в режим  на свързани  модули . Тези  филтри  
заемат  твърде  много  място  и изискват  относително  големи  обеми  
отпадъчни  води  или синтетични  отпадъчни  води . Truesdale  et al . (2) 
описват  по-малки  филтри  (1,83 m × 0,15 m в диаметър ) които  се 
захранват  с естествени  отпадъчни  води , без съдържание  на повърхност­  
ноактивни  вещества , но за които  все пак са необходими  доста  големи  
обеми . За развитието  на „зрял“ биофилм  са необходими  не по-малко  от 
14 седмици , а след  първото  въвеждане  на изпитваното  повърхност­  
ноактивно  вещество  трябва  да изминат  още 4—8 седмици , докато  
настъпи  аклиматизиране . 
3. Baumann  et al.  (3) разработват  много  по-малък  филтър , при който  се 
използва  предварително  натопен  в активна  утайка  полиестерен  памук , 
който  служи  за инертна  среда , поддържаща  биофилма . Изпитваният  
химикал  служи  за единствен  източник  на въглерод , а 
биоразградимостта  се оценява  като се измерва  DOC във входящите  и 
в изходящите  води , а също  и CO  2 в изпускания  от модула  газ. 
4. Gloyna  et al.  (4) използват  доста  по-различен  подход  и изобретяват  
въртящ  се тръбовиден  реактор . Върху  вътрешната  повърхност  на 
въртяща  се тръба , по известната  ѝ повърхнина , те отглеждат  
биофилм , като пропускат  входящите  води  от горната  страна  на 
тръбата , наклонена  под малък  ъгъл  спрямо  хоризонталата . Реакторът  
е използван  за изучаване  на биоразградимостта  на повърхност­  
ноактивни  вещества  (5), както  и за проучване  на оптималната  
дебелина  на биофилма  и на дифузията  през филма  (6). Същите  
автори  разработват  допълнително  реактора , като включват  възможност  
за определяне  на CO  2 в изпусканите  газове . 
5. Въртящият  се тръбовиден  реактор  е одобрен  от Standing Committee of 
Analysts ( Обединено  кралство ) като стандартен  метод  за оценка  на 
биоразградимостта  на химикалите  (7) и на пригодността  за обработка  
и токсичността  на отпадъчните  води  (8). Описаният  тук метод  има 
предимства  като простота , компактни  размери , възпроизводимост  и се 
нуждае  от сравнително  малък  обем  органична  среда . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
6. Върху  вътрешната  повърхност  на бавновъртяща  се тръба  смесени  или 
поотделно  се прилагат  синтетични  или битови  отпадъчни  води  и 
изпитваният  химикал . По нейната  вътрешна  повърхност  се развива  
слой  микроорганизми , подобни  на онези , които  са налични  в средата , 
изграждаща  биофилтрите . Условията  на работа  на реактора  се избират  
така че да осигуряват  адекватно  елиминиране  на органичните  вещества , 
и, ако това се изисква , окисляване  на амониевия  йон. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1097
 
7. Изходящите  води  от тръбата  се събира  и се оставя  да се утаи  и/или се 
филтрува , преди  да бъде  анализирана  за разтворен  органичен  
въглерод  (DOC) и/или за изпитвания  химикал  с помощта  на спец­  
ифичен  метод . За сравнение  при същите  условия  се задействат  също  
и контролните  модули , в които  не се добавя  от изпитвания  химикал . 
Приема  се, че разликата  в концентрацията  на DOC в изходящите  води  
от изпитвателния  и от контролния  модул  се дължи  на изпитвания  
химикал  и неговите  органични  метаболити . Посочената  разлика  се 
сравнява  с концентрацията  на добавения  изпитван  химикал  (като 
DOC) за да се изчисли  елиминирането  на изпитвания  химикал . 
8. Биоразграждането  по принцип  може  да се разграничи  от биоа­  
дсорбцията  чрез внимателно  разглеждане  на кривата  на елиминирането  
в зависимост  от времето . Обикновено  може  да се получи  потвърждение  
чрез извършване  на изпитване  за лесно  биоразграждане  (поемане  на 
кислород  или излъчване  на въглероден  диоксид ), като се използва  
аклиматизиран  инокулум , взет в края  на изпитването  от реакторите , в 
които  е добавен  изпитваният  химикал . 
ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНИЯ  ХИМИКАЛ  
9. Следва  да бъдат  известни  чистотата , разтворимостта  във вода  и 
характеристиките  по отношение  на летливостта  и адсорбцията , за да 
се даде  възможност  за правилно  тълкуване  на резултатите . 
10. Обикновено  летливи  и малко  разтворими  химикали  не могат  да се 
изпитват , освен  ако не са взети  специални  предпазни  мерки  (вж. 
допълнение  5 към глава  В.10-А). Следва  да са известни  също  и 
химичната  структура , или поне  емпиричната  формула , за да се 
изчисляват  теоретичните  стойности  и/или да се проверяват  измерените  
стойности  на параметрите , например  теоретично  потребният  кислород  
(ТПК ), DOC.  
11. Информацията  за токсичността  на изпитвания  химикал  за 
микроорганизми  (вж. допълнение  4 към глава  В.10-А) може  да бъде  
особено  полезна  при избирането  на подходящи  концентрации  за 
изпитване  и може  да бъде  съществена  за правилното  тълкуване  при 
ниски  стойности  на биологичното  разграждане . 
ПРАГОВИ  НИВА  
12. Първоначално  за пускането  даден  химикал  на пазара  се изискваше  
първичното  биоразграждане  на повърхностноактивни  вещества  да 
достига  80 % или повече . Ако не е постигната  стойността  от 80 %, 
може  да се приложи  (потвърдително ) изпитване  за симулиране  и 
повърхностноактивното  вещество  да се пусне  на пазара , само  ако 
повече  от 90 % от конкретния  химикал  бъде  елиминиран . По 
отношение  на химикалите  по принцип  не става  дума  за нива  на 
преминаване /непреминаване , а стойността  в проценти  на постигнатото  
елиминиране  може  да се използва  в приблизителни  изчисления  на 
вероятната  концентрация  в околната  среда , която  да се използва  в 
оценките  на риска , който  химикалите  пораждат . В множество  
изследвания  на чисти  химикали  процентът  на елиминиране  на DOC 
достига  до > 90 % при над три четвърти , и > 80 % при над 90 % от 
химикалите , които  са показали  някаква  значима  степен  на 
биоразградимост . 
РЕФЕРЕНТНИ  ХИМИКАЛИ  
13. За да се гарантира , че експерименталната  процедура  е правилно  изпъ­  
лнена , полезно  понякога  да се изпитват  референтни  химикали , чието  
поведение  е известно . Сред  тези химикали  например  са адипиновата  
киселина , 2-фенилфенолът , 1-нафтолът , дифеновата  киселина  и 1-нафт­  
оената  киселина . 
ВЪЗПРОИЗВОДИМОСТ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
14. Относителното  стандартно  отклонение , определено  от лаборатория  в 
Обединеното  кралство , възлизаше  в рамките  на изпитванията  на 
3,5 %, а между  изпитванията  — на 5 % (7).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1098
 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Апаратура  
Реактори  с въртящи  се тръби  
15. Апаратът  (вж. фигури  1 и 2 в допълнение  8) се състои  от набор  от 
акрилни  тръби  с дължина  30,5 cm и вътрешен  диаметър  5 cm, разп­  
оложени  върху  гумирани  колелца , обхванати  от метална  поддържаща  
рамка . Всяка  тръба  има външна  издатина  с дебелина  приблизително  
0,5 cm, за да се задържа  върху  колелцата , вътрешната  повърхност  е 
обработена  с груба  стоманена  вълна  и снабдена  също  с издатина  от 
0,5 cm в горния  край , която  да задържа  течността . Тръбите  са 
наклонени  под ъгъл  от около  един  градус  към хоризонталата , за да 
се осигури  необходимото  време  за контакт , когато  изпитваната  среда  
е налята  в чиста  тръба . Гумираните  колелца  се задвижват  от бавно­  
въртящ  се двигател  с регулируема  скорост . Температурата  на тръбите  
се контролира , като те се разполагат  в помещение  с постоянна  
температура . 
16. Чрез  разполагане  на всяка  тръба  на реактора  в запушена  тръба  с малко  
по-голям  размер  и осигуряване  на херметичността  на свръзките , 
излизащият  CO  2 може  да бъде  събиран  в алкален  разтвор  за 
последващо  измерване  (6). 
17. За всяка  тръба  в съд (A) за съхранение  с обем  20 l се съдържа  запас  за 
24 часа органична  среда  с добавен  изпитван  химикал , ако е приложимо  
(вж. фигура  2). Ако е необходимо , разтворът  на изпитвания  химикал  
може  да се дозира  отделно . Близо  до дъното  на всеки  съд за 
съхранение  се намира  изходен  отвор , свързан  чрез тръбичка  от 
подходящ  материал , напр . от силиконова  гума , през перисталтична  
помпа  (B) към стъклена  или акрилна  подаваща  тръба , която  влиза  на 
дълбочина  2—4 mm в горната  (входна ) част на наклонената  тръба  (C). 
изходящата  течност  се оставя  да капе  от долния  край  на наклонената  
тръба  и се събира  в друг  съд за съхранение  (D). Изходящата  течност  се 
оставя  да се утаи  или се филтрува  преди  да бъде  анализирана . 
Апарат  за филтруване  — центрофуга  
18. Устройство  за филтруване  на проби  с мембранни  филтри  с подходящ  
размер  на порите  (номинален  диаметър  на отворите  0,45 μm), които  
адсорбират  разтворимите  органични  химикали  или освобождават  
органичен  въглерод  в минимална  степен . Ако се използват  филтри , 
които  освобождават  органичен  въглерод , те грижливо  се промиват  с 
гореща  вода , за да се отстрани  подлежащият  на отмиване  органичен  
въглерод . Вместо  това може  да се използва  центрофуга , с която  да 
може  да се постигне  40 000 m/sec  2 . 
19. Аналитично  оборудване  за определяне  на: 
— DOC/ общ органичен  въглерод  (TOC), или химично  потребен  
кислород  (ХПК ), 
— конкретния  химикал  (HPLC, GC и т.н.) ако е необходимо , 
— рН, температура , киселинност , алкалност , 
— амониев  йон, нитрити , нитрати , ако изпитванията  се извършват  при 
условия  на нитрификация . 
Вода  
20. Чешмяна  вода , съдържаща  по-малко  от 3 mg/l DOC.  
21. Дестилирана  или дейонизирана  вода , съдържаща  по-малко  от 2 mg/l 
DOC.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1099
 
Органична  среда  
22. Като  органична  среда  може  да се използват  синтетични  или битови  
отпадъчни  води , или смес  от тях. Беше  доказано , че използването  
само  на битови  отпадъчни  води  често  води  до повишено  елиминиране  
на DOC (в модули  с активна  утайка ) и дори  позволява  елиминирането  
и биоразграждането  на някои  химикали , които  не са биоразградими  
при използване  на синтетични  отпадъчни  води  по рецептурата  на 
ОИСР . Поради  това се препоръчва  използването  на битови  отпадъчни  
води . Измерва  се концентрацията  на DOC (или ХПК ) във всяка  нова  
партида  органична  среда . Киселинността  или алкалността  на орга­  
ничната  среда  следва  да бъде  известна . Средата  може  да наложи  доба­  
вянето  на подходящ  буфер  (натриев  хидрогенкарбонат  или калиев  
хидрогенфосфат ), ако киселинността  или алкалността  е ниска , за да 
се поддържа  рН от около  7,5 ± 0,5 в реактора  по време  на изпитването . 
Количеството  буфер  и моментът  на добавянето  му се определят  във 
всеки  конкретен  случай . 
Синтетични  отпадъчни  води  
23. В един  литър  чешмяна  вода  се разтварят : пептон , 160 mg месен  
екстракт , 110 mg; уреа , 30 mg; безводен  калиев  дихидрогенфосфат , 
(KH  2 PO 4 ), 28 mg; натриев  хлорид , (NaCl), 7 mg; калциев  хлорид  
дихидрат  (CaCl  2 ·2H 2 O), 4 mg; магнезиев  сулфат  хептахидрат , 
MgSO  4 ·7H 2 O, 2 mg. Тези  синтетични  отпадъчни  води  по ОИСР  са 
примерни ; те осигуряват  средна  концентрация  на DOC от около  100 
mg/l. Вместо  тях може  да се използват  води  с друг  състав  с приблиз­  
ително  същата  концентрация  на DOC, които  да са по-близо  до битовите  
отпадъчни  води . Посочените  синтетични  отпадъчни  води  могат  да се 
приготвят  с дестилирана  вода  в концентрирана  форма  и да се 
съхраняват  при около  1 °С до една  седмица . Когато  е необходимо , те 
се разреждат  с чешмяна  вода . (Тази  среда  е незадоволителна , напр . 
концентрацията  на азот е много  висока , съдържанието  на въглерод  е 
относително  ниско , но не е предложено  нищо  по-добро , освен  да се 
добави  още фосфат  като буфер  и допълнително  количество  пептон ). 
Битови  отпадъчни  води  
24. Използват  се прясно  утаени  отпадъчни  води , събирани  ежедневно  от 
пречиствателни  станции , приемащи  предимно  битови  отпадъчни  води . 
Те трябва  да са събрани  от преливника  на първия  утаител  или от 
водите , постъпващи  за третиране  в пречиствателна  станция  с активна  
утайка , и почти  да не съдържат  груби  частици . Отпадъчните  води  може  
да се използват  след  съхранение  в продължение  на няколко  дни при 
около  4 °С, ако се докаже , че стойността  на DOC (или ХПК ) не е 
намаляла  значително  (т.е. с по-малко  от 20 %) по време  на 
съхранението . С цел да се ограничат  смущенията  в системата , стой­  
ността  на DOC (или ХПК ) на всяка  нова  партида  следва  да се коригира  
преди  употреба  до подходяща  постоянна  стойност , напр . чрез 
разреждане  с чешмяна  вода  
Смазочно  масло  
25. За смазване  на ролките  на перисталтичната  помпа  може  да се използва  
глицерин  или маслинено  масло , тъй като те са подходящи  за 
използване  с тръби  от силиконова  гума . 
Изходни  разтвори  на изпитвания  химикал  
26. Приготвят  се изходни  разтвори  с подходяща  концентрация  (напр . 1—5 
g/l) на химикалите  с добра  разтворимост  в дейонизирана  вода  или в 
минералната  част на синтетичните  отпадъчни  води . За неразтворимите  
химикали  вж. допълнение  5 в глава  В.10-А. Настоящият  метод  не е 
подходящ  за летливи  химикали , ако не се направят  изменения  на 
реакторите  с тръби  (точка  16). Определя  се DOC и TOC на изходния  
разтвор  и се повтарят  измерванията  за всяка  нова  партида . Ако 
разликата  между  DOC и TOC е по-голяма  от 20 %, се проверява  разт­  
воримостта  във вода  на изпитвания  химикал . Сравнява  се DOC или 
концентрацията  на изпитвания  химикал , измерена  чрез специфичен  
анализ  на изходния  разтвор , с номиналната  стойност , за да се 
установи  дали  добивът  е достатъчно  добър  (обикновено  може  да се 
очаква  добив  > 90 %. Проверява  се, по-специално  за дисперсии , дали ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1100
 
DOC може  да се използва  като параметър  за анализ , или може  да се 
използва  само  аналитична  техника , специфична  за изпитвания  химикал . 
При дисперсии  се изисква  центрофугиране  на пробите . За всяка  нова  
партида  чрез специфичен  анализ  се определят  DOC, ХПК  или 
изпитваният  химикал . 
27. Определя  се рН на изходния  разтвор . Получаването  на екстремни  
стойности  означава , че добавянето  на химикала  може  да повлияе  на 
pH на активната  утайка  в системата  за изпитване . В този случай  с 
малки  количества  неорганична  киселина  или основа  се неутрализира  
стандартният  разтвор  до получаване  на pH, равно  на 7 ± 0,5, като се 
избягва  утаяване  на изпитвания  химикал . 
ПРОЦЕДУРА  
Подготвяне  на органичната  среда  за добавяне  
28. Контейнерите  за входящите  и за изходящите  води , а също  и тръбите  от 
едните  към другите , старателно  се почистват , за да се предотврати  
микробен  растеж  в началото  на изпитването  и по време  на самото  
изпитване . 
29. Синтетичните  отпадъчни  води  (точка  23) се приготвят  всеки  ден или от 
твърдите  вещества , или с подходящо  разреждане  с чешмяна  вода  на 
концентрирания  изходен  разтвор . Необходимото  количество  се измерва  
с мерителен  цилиндър  и се добавя  в чист  съд за входящи  води . Също  
така, към синтетичните  отпадъчни  води  преди  разреждането  при необ­  
ходимост  се добавя  необходимото  количество  изходен  разтвор  на 
изпитвания  химикал  или на референтния  химикал . Ако е по-удобно , 
или ако е необходимо  да се избегне  загуба  на изпитвания  химикал , в 
отделен  съд се приготвя  отделен  разреден  разтвор  на изпитвания  
химикал , и той се подава  към наклонените  тръби  с отделна  помпа  за 
дозиране . 
30. Вместо  това (и за препоръчване ) може  да се използват  утаени  битови  
отпадъчни  води  (точка  24), които  се събират , ако е възможно , всеки  
ден. 
Функциониране  на реакторите  с въртящи  се тръби  
31. За оценката  на един  изпитван  химикал  са необходими  два идентични  
реактора  с въртящи  се тръби , и те се сглобяват  в помещение  с 
постоянна  температура , обикновено  равна  на 22 ± 2 ° С. 
32. Перисталтичната  помпа  се регулира  да подава  250 ± 25 ml/h органична  
среда  (без изпитван  химикал ) в наклонените  тръби , които  се въртят  със 
скорост  18 ± 2 об/min. Тръбите  на помпата  се намазват  със смазочното  
масло  (точка  25) в началото  на изпитването  и периодично  по време  на 
самото  изпитване , за да се гарантира  правилното  функциониране  и да 
се удължи  животът  на тръбите . 
33. Регулира  се наклонът  на тръбите  по отношение  на хоризонталата , за да 
се постигне  време  на престой  на подаваната  течност  от 125 ± 12,5 sec 
при чиста  тръба . оценява  се времето  на задържане  чрез добавяне  на 
небиологичен  маркер  (напр . NaCl, инертно  багрило ) в подаваната  
течност : времето , необходимо  за достигане  на най-високата  конце­  
нтрация  в изходящите  води , се приема  за средно  време  на задържане  
(когато  филмът  е максимално  развит , времето  на задържане  може  да 
нарасне  до около  30 минути ). 
34. Установено  е, посочените  дебити , скорости  и времена  имат  за резултат  
подходящи  проценти  на елиминиране  (> 80 %) на DOC (или ХПК ) и 
пораждат  нитрифицирани  изходящи  води . Дебитът  трябва  да се 
промени , ако елиминирането  е недостатъчно  или ако се изисква  да се 
симулира  работата  на конкретна  пречиствателна  станция . В последния  
случай  се коригира  дебитът  на добавяне  на органичната  среда , докато  
функционирането  на реактора  не се уподоби  на това на пречистват­  
елната  станция . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1101
 
Инокулиране  
35. Когато  се използват  синтетични  отпадъчни  води , инокулирането  по 
въздушен  път може  да бъде  достатъчно , за да започне  растежът  на 
микроорганизмите , като в противен  случай  към подаваната  течност  в 
продължение  на три дни се добавят  1 ml/l утаени  отпадъчни  води . 
Измерване  
36. На равни  интервали  се проверява  дали  дебитът  на дозиране  и скоростта  
на въртене  са в зададените  граници . Освен  това, измерва  се рН на 
изходящите  води , по-специално  ако се очаква  нитрификация . 
Проби  и анализ  
37. Методът , схемата  и честотата  на вземането  на проби  се избират  с оглед  
на целта  на изпитването . Например , вземат  се на случаен  принцип  
проби  от входящите  и от изходящите  води , или се събират  проби  
през по-дълъг  период , напр . 3—6 часа. През  първия  период , преди  
добавянето  на изпитвания  химикал , проби  се вземат  два пъти  
седмично . Пробите  се филтруват  през мембрани  или се центрофугират  
при около  40 000 m/sec  2 за около  15 min ( точка  18). Може  да се окаже  
необходимо  пробите  да се оставят  да се утаят  или да се филтруват  през 
груб  филтър  преди  филтруването  с мембрана . Определя  се DOC (или 
ХПК ) най-малко  два пъти  и, ако е необходимо , също  и БПК , амониеви  
йони  и нитрити /нитрати . 
38. Всички  анализи  се извършват  възможно  най–бързо  след  събирането  и 
подготвянето  на пробите . Ако се налага  отлагане  на анализите , пробите  
се съхраняват  при около  4 °С на тъмно  в пълни  догоре  и плътно  
запушени  бутилки . Ако се налага  пробите  да се съхраняват  повече  от 
48 часа, те трябва  да се съхранят  чрез дълбоко  замразяване , ацидиф­  
икация  или чрез добавяне  на подходящ  токсичен  химикал  (напр . 20 ml/l 
разтвор  на живачен (II) хлорид  с концентрация  10 g/l). Трябва  да се 
вземат  мерки  техниките  за съхранение  да не влияят  върху  резултатите  
на анализа . 
Период  на установяване  
39. През  този период  биофилмът  по повърхността  расте  и достига  
оптималната  си дебелина , което  обикновено  отнема  2 седмици  и не 
следва  да продължава  повече  от 6 седмици . Елиминирането  (точка  
44) на DOC (или ХПК ) се увеличава  и достига  стойност  в платото . 
Когато  е достигнато  плато  при сходни  стойности  в двете  тръби , 
едната  от тях се избира  за контролна  за оставащото  време  на 
изпитването , през което  техните  показатели  следва  да остават  
съизмерими . 
Въвеждане  на изпитвания  химикал  
40. На този етап изпитваният  химикал  с необходимата  концентрация , обик­  
новено  10—20 mg C/l, се добавя  към другия  реактор . В контролната  
тръба  продължава  да се подава  само  органична  среда . 
Период  на аклиматизиране  
41. Продължават  се анализите  два пъти  седмично  на DOC (или ХПК ) и, 
ако трябва  да се оценява  първичната  биоразградимост , с помощта  на 
специфичен  анализ  се измерва  и концентрацията  на изпитвания  
химикал . След  първоначалното  въвеждане  на изпитвания  химикал  се 
изчаква  от една  до шест  седмици  (или по-дълго  при специални  
условия ), за да настъпи  аклиматизация . Когато  процентът  на 
елиминиране  (точки  43—45) достигне  максималната  си стойност , във 
фазата  на плато  в рамките  на 3-седмичен  интервал  се определят  12—15 
валидни  стойности  за оценка  на средния  процент  на елиминиране . 
Изпитването  се приема  за завършено , ако е постигнат  достатъчно  
висок  процент  на елиминиране . Обикновено  изпитванията  не трябва  
да продължават  повече  от 12 седмици  след  първото  добавяне  на 
изпитвания  химикал . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1102
 
Отлепяне  на филма  
42. Относително  редовно  от тръбите  внезапно  се отделят  големи  маси  
излишен  филм  — т.нар. „отлепяне “. За да се гарантира , че не е 
нарушена  съпоставимостта  на резултатите , изпитването  следва  да 
обхване  най-малко  два пълни  цикъла  на нарастване  и отлепяне  на 
филма . 
ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Обработка  на резултатите  
43. Изчислява  се процентът  на елиминиране  на DOC ( или ХПК ) на 
изпитвания  химикал  за всяка  предвидена  във времето  оценка , като се 
използва  уравнението : 
D t ¼ 100 ½C s Ä ðE Ä E o Þâ=C s % 
където  
D t = процент  на елиминиране  на DOC (или ХПК ) в момент  t; 
Cs = концентрация  на DOC (или ХПК ) във входящите  води , дължаща  
се на изпитвания  химикал , за предпочитане  предвидена  въз 
основа  на концентрацията  в изходния  разтвор  и на добавения  
обем  от изходния  разтвор  (mg/l);  
E = измерена  стойност  на DOC (или ХПК ) в изпитваните  изходящи  
води  в момент  t (mg/l)  
Eo = измерена  стойност  на DOC (или ХПК ) в изходящите  води  от 
контролния  модул  в момент  t (mg/l).  
Изчисленията  се повтарят  за референтния  химикал , ако той е обект  на 
изпитване . 
Резултати  на контролния  реактор  
44. Степента  на елиминиране  на DOC (или ХПК ) (D  B ) на органичната  
среда  в контролните  реактори  е полезна  информация  при оценката  на 
биоразграждането , извършвано  от биофилма  по време  на изпитването . 
Процентът  на елиминиране  се изчислява  с уравнението : 
D B ¼ 100 ð1 Ä E o=C m Þ % 
където  
C m = DOC ( или ХПК ) на органичната  среда  във входящите  води  на 
контролния  реактор  (mg/l).  
45. Изчислява  се елиминирането  (D  ST ) на изпитвания  химикал , ако е 
последният  измерван  със специфичен  метод  за анализ  във всеки  
момент  на оценката , като се използва  уравнението : 
DST ¼ 100 ð1 Ä S e=S i Þ % 
където  
Si = измерена  или — за предпочитане  — очаквана  концентрация  на 
изпитвания  химикал  в изпитваните  входящи  води  (mg/l)  
Se = измерена  концентрация  на изпитвания  химикал  в изпитваните  
изходящи  води  момент  t (mg/l)  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1103
 
Ако аналитичният  метод  дава положителна  стойност  при неизменени  
отпадъчни  води , която  е еквивалентна  на S c mg/l, процентът  на 
елиминиране  (D  SC ) се изчислява  по следната  формула : 
DSC ¼ 100 ðS i Ä S e þ S c Þ=ðS i þ S c Þ % 
Изразяване  на резултатите  от изпитването  
46. Начертава  се кривата  на процентите  на елиминиране  D t и D ST (или 
D SC ), ако са известни , в зависимост  от времето  (вж. допълнение  2 в 
глава  В.10-А). Като  процент  на елиминиране  на изпитвания  химикал  се 
приема  средната  стойност  (закръглена  към най-близкото  цяло  число ) и 
стандартното  отклонение  на 12—15 стойности  на D T (и на D ST , ако са 
известни ), получени  по време  на фазата  на плато . От формата  на 
кривата  на елиминирането  на изпитвания  химикал  могат  да се 
направят  някои  изводи  за процеса  на елиминиране . 
Адсорбция  
47. Ако се наблюдава  висока  степен  на елиминиране  на DOC на 
изпитвания  химикал  в началото  на изпитването , изпитваният  химикал  
вероятно  е елиминиран  чрез адсорбция  в биофилма . Това  е възможно  
да се докаже  чрез определяне  на адсорбирания  изпитван  химикал  в 
отлепената  маса  на филма . Не е обичайно  степента  на елиминиране  
на DOC на адсорбируеми  химикали  да бъде  висока  през цялото  
изпитване ; нормално  е първоначално  да е налице  висока  степен  на 
елиминиране , която  постепенно  намалява  до достигането  на равновесна  
стойност . Ако обаче  адсорбираният  изпитван  химикал  е способен  да 
предизвика  аклиматизиране  на микробната  популация , степента  на 
елиминиране  на DOC на изпитвания  химикал  може  по-късно  да 
нарасне  и да достигне  до високи  стойности  в платото . 
Латентна  фаза  
48. Както  и в статичните  пресяващи  изпитвания , преди  пълното  
проявяване  на биоразграждането  се наблюдава  латентна  фаза  при 
много  изпитвани  химикали . По време  на латентната  фаза , аклим­  
атизирането  или адаптирането  на разграждащите  бактерии  протича  
при почти  пълна  липса  на елиминиране  на изпитвания  химикал ; след  
това започва  първоначалният  растеж  на бактериите . Когато  са 
елиминирани  около  10 % от първоначалното  количество  от изпитвания  
химикал  (след  адсорбция , ако е протекла  такава ), тази фаза  завършва  и 
условно  се допуска , че започва  фазата  на разграждането . Латентната  
фаза  често  е много  променлива  и слабо  възпроизводима . 
Фаза  на плато  
49. Фазата  на плато  на кривата  на елиминирането  при непрекъснато  
изпитване  се определя  като фазата , по време  на която  се извършва  
максимално  разграждане . Фазата  на плато  следва  да трае поне  3 
седмици  и да бъде  определена  от около  12 до 15 измерени  валидни  
стойности . 
Средна  степен  на елиминиране  на изпитвания  химикал  
50. Средната  стойност  се изчислява  въз основа  на стойностите  на 
елиминирането  D t (и D st , ако е известно ) на изпитвания  химикал  във 
фазата  на плато . След  закръгляне  към най-близкото  цяло  число  (1 %) тя 
представлява  степента  на елиминиране  на изпитвания  химикал . 
Препоръчва  се също  да се изчисли  и доверителен  интервал  от 95 % 
от средната  стойност . По подобен  начин  се изчислява  и средната  
степен  (D  B ) на елиминиране  на органичната  среда  в контролния  съд. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1104
 
Признаци  на биоразграждане  
51. Ако изпитваният  химикал  не се адсорбира  в значителна  степен  в 
биофилма  и кривата  на елиминирането  има типичната  форма  на 
крива  на биоразграждане  — с латентна  фаза , фаза  на разграждане  и 
фаза  на плато  (точки  48 и 49), измереното  елиминиране  може  със 
сигурност  да се обясни  с биоразграждане . Ако е налице  силно  
начално  елиминиране , с изпитването  за симулиране  не може  да 
направи  разграничаване  между  биологични  и абиотични  процеси  на 
елиминиране . В подобни  случаи , а и в други  случаи , в които  е 
налице  съмнение  по отношение  на биоразграждането  (напр . ако е 
настъпило  разслояване ), се предприема  анализ  на адсорбирания  
изпитван  химикал  в проби  от филма  или се извършва  допълнително  
статично  (пресяващо ) изпитване  за биоразграждане  въз основа  на 
параметри , ясно  свидетелстващи  за биологичен  процес . Такива  
изпитвания  са методите  за определяне  на потреблението  на кислород  
(глава  В.4 от настоящото  приложение , Г, Д и Е) (9) или изпитване  за 
измерване  на отделянето  на CO  2 (глава  В.4-В от настоящото  прил­  
ожение  или метод  за изпитване  в свободно  пространство ) (10); 
използва  се като инокулум  предварително  експониран  биофилм  от 
подходящ  реактор . 
52. Ако е измерено  както  елиминирането  на DOC, така и елиминирането  
на специфичния  химикал , наличието  на значителна  разлика  между  
техните  проценти  на елиминиране  (по-нисък  за първото , отколкото  за 
второто ) показва  наличието  в изходящите  води  на междинни  органични  
продукти , чието  биоразграждане  може  да е по-трудно ; тези продукти  
следва  да бъдат  изследвани . 
Валидност  на резултатите  
53. Изпитването  се приема  за валидно , ако степента  на елиминиране  на 
DOC (или ХПК ) в контролните  модули  е > 80 % след  2-седмично  
функциониране  и не е наблюдавано  нищо  необичайно . 
54. Ако е изпитан  (референтен ) химикал , който  е лесно  биоразградим , 
степента  на биоразграждане  трябва  да бъде  > 90 %, а разликата  
между  стойности  от паралелно  изпитване  не трябва  да е по-голяма  от 
5 %. Ако резултатите  не отговарят  на тези два критерия , следва  да се 
преразгледат  процедурите  за изпитване  и/или да се използват  битови  
отпадъчни  води  от друг  източник . 
55. Също  така, стойностите  на биоразграждането  в паралелни  модули  (ако 
са използвани ), в които  се третира  изпитваният  химикал , не трябва  да 
се различават  с повече  от 5 %. Ако този критерий  не е изпълнен , но 
степента  на елиминиране  е висока , анализът  продължава  още три 
седмици . Ако степента  на елиминиране  е ниска , следва  да се 
изследва  инхибиращото  въздействие  на изпитвания  химикал , ако не е 
известно , и да се повтори  изпитването  при по-ниска  концентрация  на 
изпитвания  химикал , ако това е възможно . 
Доклад  от изпитването  
56. В доклада  от изпитването  се включва  следното : 
Изпитван  химикал : 
— данни  за идентифициране  на химикала , 
— физична  природа  и, където  е подходящо , физични  и химични  
свойства . 
Условия  на изпитването : 
— всякакви  изменения  на изпитвателната  система , по-специално  ако са 
изпитвани  неразтворими  или летливи  химикали , 
— тип органична  среда , 
— съотношение  и естество  на индустриалните  отпадъци  в отпадъчните  
води , ако са използвани  и ако са известни , 
— метод  на инокулиране , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1105
 
— изходен  разтвор  на изпитвания  химикал  — съдържание  на DOC 
(разтворен  органичен  въглерод ) и TOC (общ органичен  въглерод ); 
ако се касае  за суспензия  — как е приготвена ; използвана (и) при 
изпитването  концентрация (и), причини , ако ХПК  е извън  обхвата  
10—20 mg/l; метод  на добавяне ; дата на първото  добавяне ; промени  
на концентрацията , 
— средно  време  на задържане  на течността  (без растеж ) скорост  на 
въртене  на тръбата ; приблизителен  ъгъл  на наклон , ако е възможно , 
— данни  за отлепването ; време  и интензивност , 
— температура  и температурен  обхват  при изпитването , 
— използвани  аналитични  методи . 
Резултати  от изпитването : 
— всички  данни  от измервания  за DOC, ХПК , специфични  анализи , 
рН, температура , азотсъдържащи  химикали , ако е подходящо , 
— всички  изчислени  стойности  на D t (или D tc ), D  B , D s , представени  в 
таблична  форма , както  и криви  на елиминирането , 
— информация  за латентната  фаза  и за фазата  на плато , продължит­  
елността  на изпитването , степента  на елиминиране  на изпитвания  
химикал , тази на референтния  химикал  (ако е изпитана ) и тази на 
органичната  среда  (в контролния  модул ), а също  и статистически  
данни  и декларации  за биоразградимостта  и валидността  на 
изпитването , 
— обсъждане  на резултатите . 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) Gerike P, Fischer W, Holtmann W (1980). Biodegradability determinations 
in trickling filter units compared with the OECD Confirmatory Test. Wat. 
Res. 14: 753-758.  
(2) Truesdale GA, Jones K, Vandyke KG (1959). Removal of synthetic 
detergents in sewage treatment processes: Trials of a new biologically attackable material.Wat. Waste Tr. J. 7: 441-444.
 
(3) Baumann U, Kuhn G and Benz M. (1998) Einfache Versuchsanordnung 
zur Gewinnung gewässerökologisch relevanter Daten, UWSF - Z. Umwel ­
tchem. Ökotox. 10: 214-220.  
(4) Gloyna EF, Comstock RF, Renn CE (1952). Rotary tubes as experimental 
trickling filters. Sewage ind. Waste 24: 1355-1357.  
(5) Kumke GW, Renn CE (1966). LAS removal across an institutional 
trickling filter. JAOCS 43: 92-94.  
(6) Tomlinson TG, Snaddon DHM, (1966). Biological oxidation of sewage by 
films of micro-organisms. Int.J. Air Wat. Pollut. 10: 865-881.  
(7) Her Majesty’s Stationery Office (1982). Methods for the examination of 
waters and associated materials. Assessment of biodegradability, 1981, London.
 
(8) Her Majesty’s Stationery Office (1984). Methods for the examination of 
waters and associated materials. Methods for assessing the treatability of 
chemicals and industrial waste waters and their toxicity to sewage treatment 
processes, 1982, London.  
(9) Глава  9 от настоящото  приложение , Определяне  на пълно  
биоразграждане  А-Е. 
(10) ISO 14593 (1998). Качество  на водата  — Оценяване  на крайната  
биоразградимост  на органичните  съединения  във водна  среда . Метод  
за изпитване  с анализиране  на освободения  неорганичен  въглерод  в 
херметични  съдове . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1106
 
Допълнение  8 
Фигура  1 
Въртящи  се тръби
  
Речник : 
Общ  изглед : 
Изглед  A/B:  
Задвижвани  колела : 
Свободни  колела : 
Задвижващ  двигател : 
Редуктор : 
Вътрешен  фланец : 
Накланящ  механизъм : 
Предавка  с конични  зъбни  колела : ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1107
 
Фигура  2 
Схема  на протичането
  
A: Захранващ  резервоар  
B: Перисталтична  помпа  
C: Въртяща  се тръба  
D: Съд за събиране  на изходящи  води  
ОПРЕДЕЛЕНИЯ : 
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез използването  на настоящия  
метод  за изпитване . 
Химикали : „следва  да се отбележи , че терминът  „химикал “ се използва  широко  в спогодбите  
на Конференцията  за околната  среда  и развитие  на ООН  и в следващите  документи  за 
означаване  на вещества , продукти , смеси , препарати , или всякакви  други  термини , които  
могат  да се използват  в рамките  на съществуващите  системи  за означаване  на разглежданите  
продукти “. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1108
 
В. 11.  БИОЛОГИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ . 
ИЗПИТВАНЕ  ЗА ПОТИСКАНЕ  ДИШАНЕТО  НА АКТИВИРАНА  
УТАЙКА  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Описаният  метод  оценява  ефекта  на изпитваното  вещество  
върху  микроорганизмите  посредством  измерване  на степента  
на дишане  при дефинирани  условия  в присъствие  на различни  
концентрации  на изпитваното  вещество . 
Целта  на този метод  е да предостави  бързо  средство  за 
пресяващо  изпитване , при което  веществата , можещи  да 
окажат  нежелано  влияние  върху  станциите  за биологично  преч­  
истване  с аеробни  микроорганизми , да бъдат  идентифицирани , и 
да демонстрира  подходящи  непотискащи  концентрации  на 
изпитваните  вещества , които  да се използват  при изпитванията  
за биологична  разградимост . 
Дефинитивното  изпитване  може  да бъде  предшествано  от 
изпитване  за определяне  на диапазон . То дава информация  за 
диапазона  на концентрациите , които  да се използват  при 
основното  изпитване . 
В проекта  за изпитването  трябва  да бъдат  включени  две 
контроли  без изпитвано  вещество , едната  в началото  и другата  
в края  на експерименталната  серия . Всяка  партида  активирана  
утайка  трябва  също  да бъде  проверена  с помощта  на вещество  за 
сравнение . 
Този  метод  най-лесно  се използва  с вещества , които  поради  
своята  разтворимост  във вода  и ниска  летливост  вероятно  
остават  във водата . 
За вещества  с ограничена  разтворимост  в изпитваните  среди  
може  да не е възможно  да се определи  EC  50 . 
Резултатите , базирани  на постъпването  на кислород , могат  да 
доведат  до погрешни  изводи , когато  изпитваното  вещество  
притежава  склонност  да разединява  окислителното  
фосфорилиране . 
За провеждането  на изпитването  е полезно  да е налице  следната  
информация : 
— разтворимост  във вода , 
— парно  налягане , 
— структурна  формула , 
— чистота  на изпитваното  вещество . 
Препоръка  
Активираната  утайка  може  да съдържа  потенциално  патогенни  
организми  и с нея трябва  да се работи  внимателно . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И ЕДИНИЦИ  
Степента  на дишане  представлява  кислородната  консумация  на 
микроорганизмите  в аеробната  утайка  на отпадъчните  води , 
изразена  обичайно  като mg О 2 за mg утайка  за час. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1109
 
За да се изчисли  потискащият  ефект  на дадено  изпитвано  
вещество  при конкретна  концентрация , степента  на дишане  се 
изразява  като процент  от средната  стойност  на двете  контролни  
степени  на дишане : 
1 Ä 2R s 
Rc 1 þ Rc  2 Í Î  
Ü 100 ¼ пpоцент  потискане  
където : 
R s = степен  на кислородна  консумация  при изпитваната  
концентрация  на веществото , 
R C1 = степен  на кислородна  консумация , контрола  1, 
R C2 = степен  на кислородна  консумация , контрола  2, 
ЕС 50 при този метод  представлява  концентрацията  на 
изпитваното  вещество , при която  дихателната  степен  е 50 % 
от тази, която  е демонстрирана  от контролата  при условията , 
описани  за този метод . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Препоръчва  се като вещество  за сравнение  да се използва  3,5- 
дихлорофенол , който  е познат  инхибитор  на дишането , и да се 
изпитва  за ЕС 50 при всяка  партида  активирана  утайка  като 
средство  за проверка  дали  чувствителността  на утайката  не е 
абнормна . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Дихателната  степен  на активираната  утайка , захранена  със 
стандартно  количество  синтетични  отпадъчни  води , се измерва  
след  време  на експозиция  30 минути  или три часа, или и двете . 
Измерва  се също  и дихателната  степен  на същата  активирана  
утайка  в присъствие  на различни  концентрации  на изпитваното  
вещество  при иначе  идентични  условия . Потискащият  ефект  на 
изпитваното  вещество  при конкретна  концентрация  се изразява  
като процент  от средните  дихателни  степени  на двете  контроли . 
Стойност  ЕС 50 се изчислява  от измерванията  при различни  
концентрации . 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Резултатите  от изпитването  са валидни , ако: 
— дихателните  степени  на двете  контроли  не се различават  
помежду  си с повече  от 15 %,  
— стойността  ЕС 50 (30 минути  и/или три часа) за 3,5- 
дихлорофенол  е в рамките  на приетия  диапазон  5 до 30 mg/l.  
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Реактиви  
1.6.1.1. Р а з т в о р и н а и з п и т в а н о т о в е щ е с т в о , 
Разтворите  на изпитваното  вещество  са прясно  приготвени  в 
началото  на изпитването , като се използва  изходен  разтвор . 
Подходящ  е изходен  разтвор  с концентрация  0,5 g/l, ако се 
спазва  препоръчаната  по-долу  процедура . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1110
 
1.6.1.2. Р а з т в о р н а к о н т р о л н о в е щ е с т в о 
Например , разтвор  на 3,5-дихлорофенол  може  да бъде  приготвен  
чрез разтваряне  на 0,5 g 3,5- дихлорофенол  в 10 ml lMNaOH, 
разреждане  до приблизително  30 ml с дестилирана  вода , 
добавяне  при едновременно  разбъркване  на 0,5 M H  2 SO 4 до 
започване  на преципитация  — ще бъдат  необходими  приблиз­  
ително  8 ml 0,5 М H 2 SO 4 — и накрая  разреждане  на сместа  до 
един  литър  с дестилирана  вода . pH трябва  да бъде  в диапазона  
от 7 до 8. 
1.6.1.3. С и н т е т и ч н и о т п а д ъ ч н и в о д и 
Захранване  със синтетични  отпадъчни  води  се прави  чрез 
разтваряне  на следните  количества  вещества  в един  литър  вода : 
— 16 g пептон , 
— 11 g месен  екстракт , 
— 3 g урея , 
— 0,7 g NaCl,  
— 0,4 g CaCl  2 .2H  2 O, 
— 0,2 g MgSO  4 .7H  2 O, 
— 2,8 g K  2 HPO  4 . 
Забележка  1: Синтетичната  отпадъчна  вода  представлява  100- 
кратен  концентрат  на този, който  е посочен  в Техническия  
доклад  на ОИСР  от 11 юни 1976 г.„Предложение  за метод  за 
определяне  на биологичната  разградимост  на сърфактанти , 
използвани  в синтетичните  детергенти “, с добавка  на дикалиев  
хидроген  фосфат . 
Забележка  2: Ако приготвената  среда  не се използва  веднага , тя 
се съхранява  на тъмно  при температура  от 0 до 4 o С за не по- 
дълго  от една  седмица  при условия , които  не водят  до никаква  
промяна  в нейния  състав . Преди  съхранението  средата  може  да 
бъде  и стерилизирана  или пептонът  и месният  екстракт  могат  да 
бъдат  добавени  малко  преди  провеждането  на изпитването . 
Преди  употреба  тя трябва  да бъде  щателно  смесена  и pH да 
бъде  коригирано . 
1.6.2.  Апаратура  
Апаратура  за измерване : Точното  проектиране  не е от голямо  
значение . Трябва  обаче  да има пространство  между  капака  на 
съда  и водното  ниво  и сондата  трябва  да се поставя  плътно  в 
шийката  на измервателната  колба . 
Необходимо  е обичайно  лабораторно  оборудване , и по- 
конкретно  следното : 
— апаратура  за измерване , 
— устройство  за аериране , 
— pH-електрод  и устройство  за измерване , 
— O  2 -електрод . 
1.6.3.  Приготвяне  на проба  за инокулиране  
Като  микробна  проба  за инокулиране  за изпитването  се използва  
активирана  утайка  от пречиствателна  станция , третираща  главно  
битови  отпадъчни  води . 
Ако е необходимо , при връщане  в лабораторията  едрите  частици  
могат  да бъдат  отстранени  чрез краткотрайно  утаяване , 
например  за 15 минути , и отливане  на горния  слой  по-фини  
твърди  частици , който  ще се използва . Алтернативно , утайката  
може  да бъде  смесена  с помощта  на миксер  за няколко  секунди . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1111
 
Ако се смята , че съществува  потискащ  материал , утайката  
допълнително  трябва  да бъде  измита  с чешмяна  вода  или изот­  
оничен  разтвор . След  центрофугиране  надстоящата  течност  се 
отлива  (тази процедура  се повтаря  три пъти ). 
Малко  количество  утайка  се претегля  и се изсушава . От този 
резултат  може  да се изчисли  количеството  на влажната  утайка , 
която  трябва  да бъде  суспендирана  във водата , за да се получи  
активирана  утайка  със суспендирани  в смесената  течност  твърди  
частици  в рамките  на диапазона  между  2 и 4 g/l. Това  ниво  дава 
концентрация  в експерименталната  среда  между  0,8 и 1,6 g/l, ако 
се спазва  процедурата , препоръчана  по-долу . 
Ако утайката  не може  да се използва  в деня  на вземането , към 
всеки  литър  активирана  утайка , приготвена , както  е посочено  
по-горе, се добавят  по 50 ml синтетична  отпадъчна  вода . След  
това тя се аерира  една  цяла  нощ при температура  20 ± 2  o С. 
След  това се аерира  за използване  през деня . Ако е необходимо , 
преди  използване  pH се проверява  и коригира  на pH от 6 до 8. 
Суспендираните  твърди  частици  в смесената  течност  трябва  да 
бъдат  определени , както  е описано  в предишния  абзац . 
Ако през следващи  дни трябва  да се използва  същата  партида  
активирана  утайка  (максимум  четири  дни), в края  на всеки  
работен  ден се добавят  допълнително  по 50 ml синтетични  
отпадъчни  води  на литър  утайка . 
1.6.4.  Провеждане  на изпитването  
Продължителност /време  
на експозиция : 30 минути  и/или три часа, по време  
на които  се провежда  аериране  
Вода : Питейна  вода  (ако е необходимо , 
дехлорирана ) 
Снабдяване  с въздух : Чист , обезмаслен  въздух . Въздушен  
дебит  0,5 до 1 l/min 
Апаратура  за измерване : Колба  с плоско  дъно , например  
колба  за определяне  на БПК  (био­  
логична  потребност  от кислород ) 
О 2 -метър : Подходящ  кислороден  електрод  със 
записващо  устройство  
Хранителен  разтвор : Синтетични  отпадъчни  води  (вж. по- 
горе) 
Изпитвано  вещество : Експерименталният  разтвор  е прясно  
приготвен  в началото  на изпитването . 
Вещество  за сравнение : Например  3,5-дихлорофенол  (най- 
малко  три концентрации ) 
Контроли : Инокулирана  проба  без изпитвано  
вещество  
Температура : 20 ± 2  o C. 
По-долу  е дадено  предложение  за експериментална  процедура , 
която  може  да бъде  следвана  както  за изпитваното , така и за 
веществото  за сравнение  по време  на тричасовия  период  на 
експозиция : 
Използват  се няколко  съда  (например  няколко  еднолитрови  
мерителни  чаши ). 
Трябва  да се използват  най-малко  пет концентрации , разл­  
ичаващи  се помежду  си с постоянен  фактор , за предпочитане  
непревишаващ  3,2.  
Във времето  „0“ 16 ml синтетична  отпадъчна  вода  се допълват  с 
вода  до 300 ml. Добавят  се 200 ml микробна  проба  за инок­  
улиране  и цялата  смес  (500 ml) се излива  в първия  съд (първа  
контрола  C 1 ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1112
 
Експерименталните  съдове  трябва  да се аерират  непрекъснато , 
така че разтвореният  О 2 да не спада  под 2,5 mg/l и 
непосредствено  преди  измерването  на дихателната  степен  конце­  
нтрацията  на О 2 да бъде  около  6,5 mg/l.  
Във времето  „15 минути “ (15 минути  е произволен , но удобен  
интервал ) горната  процедура  се повтаря  с изключение  на това, 
че 100 ml от изходния  разтвор  на изпитваното  вещество  се 
добавят  към 16 ml синтетична  отпадъчна  вода  преди  добавяне  
на вода  до 300 ml и микробната  проба  за инокулиране , така че 
да се получи  обем  от 500 ml. Тази  смес  после  се излива  във 
втори  съд и се аерира  както  по-горе. Този  процес  се повтаря  
през 15-минутни  интервали  с различни  обеми  от изходния  
разтвор  на изпитваното  вещество , за да се получи  серия  от 
съдове , съдържащи  различни  концентрации  от изпитваното  
вещество . Накрая  се приготвя  втора  контрола  (С 2 ). 
След  три часа се регистрира  pH и добре  размесена  проба  от 
съдържанието  на първия  съд се излива  в апаратурата  за 
измерване  и се измерва  дихателната  степен  за период  с продъ­  
лжителност  до 10 минути . 
Това  определяне  се повтаря  със съдържанието  на всеки  съд на 
15-минутни  интервали  по такъв  начин , че времето  на експозиция  
за всеки  съд да е три часа. 
Веществото  за сравнение  се изпитва  за всяка  партида  микробни  
проби  за инокулиране  по същия  начин . 
Когато  измерванията  се правят  след  30-минутна  експозиция , е 
необходим  различен  режим  (т.е. повече  от един  О 2 -метър ). 
Ако е необходимо  измерване  на химичната  консумация  на 
кислород , приготвят  се допълнителни  съдове , съдържащи  
изпитваното  вещество , подхранване  със синтетични  отпадъчни  
води  и вода , но не и активирана  утайка . Кислородната  конс­  
умация  се измерва  и се регистрира  след  аериране  в продължение  
на 30 минути  и/или три часа (време  на експозиция ). 
2. ДАННИ  И ОЦЕНКА  
Дихателната  степен  се изчислява  от записа  между  приблиз­  
ително  6,5 mg/l О 2 и 2,5 mg/l О 2 , или за 10-минутен  период , 
когато  дихателната  степен  е ниска . Частта  на дихателната  крива , 
върху  която  се измерва  дихателната  степен , трябва  да бъде  
линейна . 
Ако дихателните  степени  на двете  контроли  не се различават  с 
повече  от 15 % една  от друга  или ако ЕС 50 (30 минути  и/или три 
часа) на веществото  за сравнение  не е в приетия  диапазон  (от 5 
до 30 mg/l за 3,5-дихлорофенол ), изпитването  е невалидно  и 
трябва  да бъде  повторено . 
Процентът  на потискане  се изчислява  за всяка  изпитвана  конце­  
нтрация  (вижте  1.2). Построява  се крива  на процента  на 
потискане  срещу  концентрацията  на нормална  логаритмична  
хартия  (или логаритъма  на вероятността ) и се извежда  стой­  
ността  на ЕС 50 . 
Като  се използват  стандартни  процедури , могат  да се определят  
95 % граници  на доверителност  за стойностите  на ЕС 50 . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1113
 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следното : 
— изпитвано  вещество : данни  за химическо  идентифициране , 
— експериментална  система : източник , концентрация  и всяко  
предварително  третиране  на активираната  утайка , 
— условия  на изпитване , 
— pH на реакционната  смес  преди  измерване  на дишането , 
— експериментална  температура , 
— продължителност  на изпитването , 
— вещество  за сравнение  и неговата  измерена  ЕС 50 , 
— абиотично  постъпване  на кислород  (ако има). 
— резултати : 
— всички  измерени  данни , 
— крива  на потискане  и метод  за изчисляване  на ЕС50, 
— ЕС 50 и, ако е възможно , граници  на доверителност  95 %, 
ЕС 20 и ЕС 80 
— всички  наблюдения  и всички  отклонения  от този метод  за 
изпитване , които  може  да са оказали  влияние  върху  
резултата . 
3.2. ТЪЛКУВАНЕ  НА ДАННИТЕ  
Стойността  ЕС 50 трябва  да се възприема  просто  като едно  ръко­  
водство  за вероятната  токсичност  на изпитваното  вещество  при 
пречистване  на активирана  отпадъчна  утайка  или за микроорга­  
низмите  в отпадъчните  води , тъй като сложните  взаимодействия , 
възникващи  в околната  среда , не могат  да бъдат  точно  
симулирани  при лабораторно  изпитване . Допълнително , при 
изпитваните  вещества , които  могат  да имат  потискащ  ефект  
върху  окислението  на амония , също  могат  да се получат  
атипични  криви  на потискане . Съответно , такива  криви  трябва  
да бъдат  интерпретирани  внимателно . 
4. ПОЗОВАВАНИЯ  
(1) Международен  стандарт  ISO 8192-1986.  
(2) Broecker, B., Zahn, R.,  Water Research  11, 1977, стр. 165.  
(3) Brown, D., Hitz, H. R., Schaefer, L.,  Chemosphere  10, 1981, 
стр. 245.  
(4) ETAD (Ecological and Toxicological Association of Dyestuffs 
Manufacturing Industries),  Recommended Method No 103,  also 
described by:  
(5) Robra, B.,  Wasser/Abwasser  117, 1976, стр. 80.  
(6) Schefer, W.,  Textilveredlung  6, 1977, стр. 247.  
(7) ОИСР , Париж , 1981,  Test Guideline 209,  Решение  на Съвета  
C(84) 30 final.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1114
 
В.12. БИОЛОГИЧНО  РАЗГРАЖДАНЕ . 
МОДИФИЦИРАНО  SCAS ИЗПИТВАНЕ  
1. МЕТОД  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на метода  е да оцени  потенциалната  крайна  биологична  
разградимост  на разтворими  във вода  нелетливи  органични  
вещества , когато  са подложени  на експозиция  на относително  
високи  концентрации  на микроорганизми  за продължителен  
период  от време . През  този период  жизнеспособността  на 
микроорганизмите  се поддържа  чрез ежедневно  подхранване  с 
утаени  отпадъчни  води . (За нуждите  в края  на седмицата , отпа­  
дъчните  води  могат  да бъдат  съхранявани  при температура  4 o С. 
Алтернативно , може  да се използват  синтетичните  отпадъчни  
води  от потвърдителното  изпитване  на ОИСР . 
Възможно  е да настъпи  физико -химична  адсорбция  на 
суспендираните  твърди  вещества  и това трябва  да се вземе  
предвид  при интерпретирането  на резултатите  (вижте  3.2).  
Поради  дългия  период  на задържане  на течната  фаза  (36 часа) и 
периодичното  добавяне  на хранителни  вещества , изпитването  не 
симулира  условията , възникващи  в пречиствателната  станция  за 
отпадъчни  води . Резултатите , получени  с различни  изпитвани  
вещества , показват , че методът  притежава  висок  потенциал  за 
биологично  разграждане . 
Условията  на изпитването  са много  благоприятни  за селекция  
и/или адаптиране  на микроорганизми , които  са способни  да 
разграждат  изпитваното  съединение . (Процедурата  може  да се 
използва  и за получаване  на аклиматизирани  проби  за инок­  
улиране  за използване  при други  изпитвания .) 
При този метод  концентрацията  на разтворения  органичен  
въглерод  се използва  за оценяване  на крайната  биологична  
разградимост  на изпитваните  вещества . Предпочита  се РОВ  да 
се определя  след  подкиселяване  и продухване , а не като 
разликата  С общ – С неорганичен . 
Едновременното  използване  на специфичен  аналитичен  метод  
може  да даде  възможност  за оценка  на първичното  биологично  
разграждане  на веществото  (изчезването  на родителската  
химична  структура ). 
Методът  е приложим  само  за тези изпитвани  органични  
вещества , които  в използваната  за изпитването  концентрация : 
— са разтворими  във вода  (най-малко  20 mg разтворен  
органичен  въглерод /l), 
— имат  пренебрежимо  ниско  парно  налягане , 
— не потискат  развитието  на бактериите , 
— не се абсорбират  в значителна  степен  в експерименталната  
система , 
— не се губят  при образуване  на пяна  в изпитвания  разтвор = 
Трябва  да се определи  съдържанието  на органичен  въглерод  в 
изпитвания  материал . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1115
 
Информацията  за относителните  пропорции  на основните  
компоненти  на изпитвания  материал  ще бъдат  полезни  за 
интерпретиране  на получените  резултати , по-конкретно  в 
случаите , когато  резултатите  са ниски  или гранични . 
Информацията  за токсичността  на веществото  за микроорга­  
низмите  може  да бъде  полезна  за интерпретиране  на ниски  
резултати  и за избор  на подходяща  експериментална  конце­  
нтрация . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И ЕДИНИЦИ  
С T = концентрация  на изпитваното  вещество  като органичен  
въглерод , намиращ  се или добавян  към утаена  отпадъчна  
вода  в началото  на аерирането  (mg/l),  
C t = концентрация  на разтворения  органичен  въглерод , 
намиращ  се в надстоящата  течност  от изпитването  в 
края  на аерирането  (mg/l),  
С с = концентрация  на разтворения  органичен  въглерод , 
намиращ  се в надстоящата  течност  от контролата  в края  
на аерирането  (mg/l).  
При този метод  биологичното  разграждане  се определя  като 
изчезване  на органичния  въглерод . Биологичното  разграждане  
може  да бъде  изразено  като: 
1. Процент  на отнемане  D  da на количеството  ежедневно  
добавяно  вещество . 
D da ¼ C t Ä ðC t Ä C c Þ 
C t Ü 100  [1] 
където  
D da = разграждане /ежедневно  добавяне . 
2. Процентното  отнемане  D  ssd на количеството  вещество , в 
наличност  в началото  на всеки  ден: 
D ssd ¼ 2C T þ C ti Ä C ci Ä 3C  tðiþ1Þ þ 3C  cðiþ1Þ 
2C T þ C ti Ä C ci Ü 100  [2 (a)]  
≈ 2C T Ä 2ðC t Ä C c Þ 
2C T þ ðC t Ä C c Þ Ü 100  [2 (б)] 
където  
D ssd = разграждане /вещество  в началото  на деня ; 
индексите  i и (i + 1) се отнасят  до деня  на измерването . 
Уравнението  2(а) се препоръчва , ако РОВ  в изходящата  
течност  варира  от ден на ден, докато  уравнение  2(б) може  
да се използва , когато  РОВ  в изходящата  течност  остава  
относително  постоянен  от ден на ден. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1116
 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
В някои  случаи  при изследване  на нови  вещества  може  да са 
полезни  вещества  за сравнение . Все още обаче  не могат  да бъдат  
препоръчани  конкретни  вещества  за сравнение . 
Представени  са данните  за няколко  съединения , оценени  с 
кръгови  тестове  (вижте  допълнение  1), главно  за да може  се 
провежда  от време  на време  калибриране  на метода  и да 
позволи  сравняване  на резултатите , когато  се използва  друг  
метод . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Активираната  утайка  от станцията  за пречистване  на отпадъчни  
води  се поставя  в модул  за полунепрекъснато  изпитване  с 
активирана  утайка  (SCAS). Добавят  се изпитваното  съединение  
и утаената  битова  отпадъчна  вода  и сместа  се аерира  в продъ­  
лжение  на 23 часа. След  това аерирането  спира , утайката  се 
оставя  да се утаи  и надстоящата  течност  се отстранява . 
След  това утайката , оставаща  в камерата  за аериране , се смесва  
с допълнителна  порция  изпитвано  съединение  и отпадъчна  вода  
и цикълът  се повтаря . 
Биологичното  разграждане  се установява  посредством  
определяне  съдържанието  на разтворения  органичен  въглерод  
в настоящата  течност . Тази  стойност  се сравнява  със стойността , 
определена  за течността , която  е получена  от контролна  
епруветка , дозирана  само  с утаена  отпадъчна  вода . 
Когато  се използва  специфичен  аналитичен  метод , могат  да се 
измерят  промените  в концентрацията  на родителската  молекула  
поради  биологично  разграждане  (първична  биологична  
разградимост ). 
1.5. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
Все още не е установена  възпроизводимостта  на този метод  въз 
основа  на отнемането  на разтворения  органичен  въглерод . 
(Когато  се взема  предвид  първичното  биологично  разграждане , 
се получават  много  точни  данни  за материали , които  се 
разграждат  във висока  степен .) 
Чувствителността  на метода  в голяма  степен  се определя  от 
вариабилността  на празната  проба  и, в по-малка  степен , от 
точността  на определянето  на разтворения  органичен  въглерод  
и от нивото  на изпитваното  съединение  в течността  в началото  
на всеки  цикъл . 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА ЕКСПЕРИМЕНТАЛНАТА  ПРОЦЕДУРА  
1.6.1.  Подготовка  
Могат  да се използват  достатъчен  брой  чисти  модули  за 
аериране , алтернативно  може  да се използва  оригиналният  
модул  за SCAS изпитване  от 1,5 l, като се поставят  тръбички  
за аериране  (фигура  1) за всяко  изпитвано  вещество  и 
контролите . Сгъстеният  въздух , захранващ  експерименталните  
модули , е пречистен  през филтър  от памучна  вата и не трябва  
да съдържа  органичен  въглерод , както  и трябва  да бъде  
предварително  наситен  с вода  за намаляване  на загубите  от 
изпарение . 
От активирана  утайка  от станция  за пречистване  главно  на 
битови  отпадъчни  води  се получава  проба  смесена  течност , 
съдържаща  1 до 4 g/l суспендирани  твърди  вещества . За всека  
модул  за аериране  са необходими  приблизително  150 ml смесена  
течност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1117
 
Изходните  разтвори  на изпитваното  вещество  се приготвят  с 
дестилирана  вода . Нормално  необходимата  концентрация  е 
400 mg/l, като органичният  въглерод  дава концентрация  
20 mg/l въглерод  за изпитваното  съединение  в началото  на 
всеки  цикъл  на аериране , ако не настъпва  биологично  
разграждане . 
Ако токсичността  за микроорганизмите  разрешава , позволени  са 
и по-високи  концентрации . 
Измерва  се съдържанието  на органичен  въглерод  в изходните  
разтвори . 
1.6.2.  Условия  на изпитване  
Изпитването  трябва  да се провежда  при температура  от 20 
до 25 o С. 
Използва  се по-висока  концентрация  на аеробни  
микроорганизми  (от 1 до 4 g/l суспендирани  твърди  вещества ) 
и ефективният  период  на задържане  е 36 часа. Съдържащият  
въглерод  материал  в захранващите  отпадъчни  води  се окислява  
екстензивно , нормално  в рамките  на осем  часа след  началото  на 
всеки  цикъл  на аериране . Впоследствие  утайката  има само  
ендогенно  дишане  през остатъка  от аерирането , като през това 
време  единственият  съществуващ  субстрат  е изпитваното  
съединение , освен  ако то също  не се метаболизира  лесно . Тези  
характеристики , комбинирани  с ежедневно  повторно  инок­  
улиране  с използване  на битови  отпадъчни  води  като среда , 
създават  много  благоприятни  условия  както  за аклиматизиране , 
така и за високи  степени  на биологично  разграждане . 
1.6.3.  Провеждане  на изпитването  
Получава  се проба  смесена  течност  от подходяща  станция  за 
предимно  битова  активирана  утайка  или от лабораторен  модул , 
като тя се съхранява  при аеробни  условия , докато  се използва  в 
лабораторията . Всеки  модул  за аериране , а също  всеки  
контролен  модул  се напълват  със 150 ml смесена  течност  (ако 
се използва  оригиналният  модул  за SCAS изпитване , умножете  
дадените  обеми  по 10) и се започва  аериране . След  23 часа 
аерирането  се спира  и утайката  се оставя  да се утаи  за 45 
минути . Кранът  на всеки  съд се отваря  и се изтеглят  100 ml 
порции  от надстоящата  течност . Непосредствено  преди  
използването  се получава  проба  от утаена  битова  отпадъчна  
вода  и към утайката , оставаща  във всеки  модул  за аериране , 
се добавят  по 100 ml от нея. Аерирането  започва  отново . На 
този етап не се добавят  материали  за изпитване  и модулите  се 
захранват  ежедневно  с битова  отпадъчна  вода  само  докато  при 
утаяването  се получи  бистра  надстояща  течност . Това  обик­  
новено  отнема  две седмици , до което  време  разтвореният  
органичен  въглерод  в надстоящата  течност  в края  на всеки  
цикъл  на аериране  достига  постоянна  стойност . 
В края  на този период  индивидуалните  утаени  утайки  се смесват  
и към всеки  модул  се добавят  по 50 ml от получената  смесена  
утайка . 
Към контролните  модули  се добавят  по 95 ml от утаената  
отпадъчна  вода  и 5 ml от водата , а към експерименталните  
модули  се добавят  95 ml от утаената  отпадъчна  вода  плюс  
5 ml от изходния  разтвор  на съответното  изпитвано  съединение  
(400 mg/l). Аерирането  започва  отново  и продължава  23 часа. 
След  това утайката  се оставя  да се утаи  в продължение  на 45 
минути , изтегля  се надстояща  течност  и се анализира  за 
съдържание  на разтворен  органичен  въглерод . 
Горната  процедура  на напълване  и изтегляне  се повтаря  
ежедневно  по време  на цялото  изпитване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1118
 
Преди  утаяването  може  да се наложи  почистване  на стените  на 
модулите  за предотвратяване  акумулирането  на твърди  вещества  
над нивото  на течността . За всеки  модул  се използват  отделна  
стъргалка  и четка  за предотвратяване  на кръстосано  
замърсяване . 
В идеалния  случай  разтвореният  органичен  въглерод  в 
надстоящата  течност  се определя  ежедневно , въпреки  че е 
разрешено  и по-рядко  анализиране . Преди  анализите  течността  
се филтрира  през промити  мембранни  филтри  с размер  на 
порите  0,45 μm или се центрофугира . Мембранните  филтри  са 
подходящи , ако е сигурно , че те нито  освобождават  въглерод , 
нито  абсорбират  веществото  по време  на филтрирането . Докато  
се намира  в центрофугата , температурата  на пробата  не трябва  
да надвишава  40 o С. 
Продължителността  на изпитването  за съединения , демо­  
нстриращи  слабо  или липсващо  биологично  разграждане , е 
неопределена , но въз основа  на опита  може  да се предположи , 
че тя трябва  да бъде  обикновено  не по-малка  от 12 седмици , но 
не по-голяма  от 26 седмици . 
2. ДАННИ  И ОЦЕНКА  
От стойностите  на разтворения  органичен  въглерод  в 
надстоящата  течност  от експерименталните  и контролните  
модули  се построява  графика  срещу  времето . 
При постигане  на биологично  разграждане  нивото , достигнато  
при изпитването , се доближава  до нивото , достигнато  при 
контролите . След  като се установи , че разликата  между  двете  
нива  е постоянна  в продължение  на три последователни  
измервания , правят  се такъв  брой  допълнителни  измервания , 
че да бъдат  достатъчни  за статистическа  обработка  на данните . 
и се изчислява  процентът  на биологично  разграждане  на 
изпитваното  съединение  (D  da или D ssd , вижте  1.2).  
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Ако е възможно , протоколът  от изпитването  съдържа  следното : 
— цялата  информация  за типа  отпадъчна  вода , типа  използвани  
модули  и експерименталните  резултати , отнасящи  се до 
изпитваното  вещество , веществото  за сравнение , ако се 
използва , и празната  проба , 
— температурата , 
— кривата  на отнемане  с описание , начина  на изчисляване  
(вижте  1.2),  
— дата и място  на вземане  на проби  от активирана  утайка  и 
отпадъчни  води , състояние  на адаптиране , концентрация  и 
т.н., 
— научните  мотиви  за всички  изменения  в експерименталната  
процедура , 
— подпис  и дата. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1119
 
3.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Тъй като веществото , което  се изпитва  по този метод , няма  да 
подлежи  на лесно  биологично  разграждане , отстраняването  на 
РОВ , дължащо  се единствено  на биологично  разграждане , 
нормално  ще бъде  постепенно  в продължение  на дни или 
седмици , освен  в случаи , когато  аклиматизирането  е внезапно , 
както  се вижда  от рязкото  изчезване , възникващо  след  няколко  
седмици . 
Физикохимичната  адсорбция , обаче , понякога  може  да играе  
важна  роля . Това  се вижда , когато  е налице  пълно  или 
частично  отнемане  на добавения  в началото  РОВ . Какво  ще се 
случи  впоследствие , зависи  от фактори , като степента  на 
адсорбция  и концентрацията  на суспендираните  твърди  
вещества  в изхвърлената  изходяща  течност . Обикновено  
разликата  между  концентрациите  на РОВ  в контрола  и 
експерименталните  надстоящи  течности  постепенно  нараства  в 
сравнение  с първоначалната  ниска  стойност  и, освен  ако не 
настъпи  аклиматизиране , тази разлика  после  остава  при новата  
стойност  за останалата  част от експеримента . 
Ако трябва  да се направи  разграничение  между  биологичното  
разграждане  (или частично  разграждане ) и адсорбцията , са необ­  
ходими  допълнителни  изпитвания . Това  може  да се направи  по 
много  начини , но най-убедително  е използването  на 
надстоящата  течност  или утайката  като проба  за инокулиране  
в основно  изпитване  (за предпочитане  респирометричен  тест). 
Изпитваните  вещества  с високо  неадсорбтивно  отнемане  на РОВ  
при това изпитване  трябва  да се приемат  за потенциално  
биологично  разградими . Частичното  неадсорбтивно  отнемане  
показва , че химическото  вещество  е подложено  на най-малко  
частично  биологично  разграждане . 
Ниското  или близкото  до нула  отнемане  на РОВ  може  да се 
дължи  на потискане  на микроорганизмите  от изпитваното  
вещество  и това може  да се докаже  и чрез лизиране  или 
загуба  на утайка , водещо  до образуване  на мътна  надстояща  
течност . Изпитването  трябва  да бъде  повторено , като се 
използва  по-ниска  концентрация  на изпитваното  вещество . 
Използването  на специфичен  аналитичен  метод  или маркирано  с 
14 С изпитвано  вещество  могат  да дадат  възможност  за по-голяма  
чувствителност . При маркирано  с 14 С изпитвано  съединение  
възстановяването  на 14 СО 2 ще потвърди , че е настъпило  
биологично  разграждане . 
Когато  резултатите  са дадени  и за първичното  биологично  
разграждане , ако е възможно , трябва  да бъде  дадено  обяснение  
за изменението  в химичната  структура , която  води  до загуба  на 
отговор  при родителското  изпитвано  вещество . 
Потвърждаването  на аналитичния  метод  трябва  да бъде  
представено  заедно  с отговора , получен  при празната  експериме­  
нтална  среда . 
4. ПОЗОВАВАНИЯ  
(1) ОИСР , Париж , 1981,  Test Guideline 302 А, Решение  на 
Съвета  С(81) 30 окончателен . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1120
 
Допълнение  1 
SCAS изпитване : примерни  резултати  
Вещество  С T 
(mg/l) с t —с c 
(mg/l) Процент  на 
биологично  
разграждане  
D da Продължит­  
елност  на 
изпитването , 
(дни) 
4-ацетрил -аминобензен  17,2 2,0 85 40 
Тетра -пропилен  бензен  17,3 8,4 51,4 40 
4-нитрофенол  16,9 0,8 95,3 40 
Диетилен  гликол  16,5 0,2 98,8 40 
Анилин  16,9 1,7 95,9 40 
Циклопентан  тетра  карбоксилат  17,9 3,2 81,1 120  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1121
 
Допълнение  2 
Примерна  експериментална  апаратура  
Фигура  1
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1122
 
В.13. БИОКОНЦЕНТРАЦИЯ : ПРОТОЧЕН  ТЕСТ  ВЪРХУ  РИБИ  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  на биоконцентрация  е точно  копие  на ОECD 
TG 305 (1996 г.). 
1.1. УВОД  
Настоящият  метод  описва  процедура  за охарактеризиране  на 
биоконцентрационния  потенциал  на вещества  в риба  при 
проточни  условия . Въпреки  че проточните  тестови  режими  са 
за предпочитане , полустатичните  режими  също  са допустими , 
при условие  че са удовлетворени  критериите  за валидност . 
Методът  дава достатъчно  подробности  за извършване  на теста , 
като същевременно  допуска  задоволителна  свобода  за 
адаптиране  на експерименталния  проект  към условията  в 
отделните  лаборатории  и по отношение  на променящите  се 
характеристики  на тестовите  вещества . Той се прилага  най- 
успешно  при стабилни  органични  химикали  със стойности  log 
P ow между  1,5 и 6,0 (1), но може  да се прилага  към суперлип­  
офилни  вещества  (с log P  ow > 6,0). Предварителната  оценка  на 
коефициента  на биоконцентрация  (BCF), понякога  отбелязван  
като K  B , за такива  суперлипофилни  вещества  вероятно  ще 
бъде  по-голяма  от стойността  на коефициента  на биоконце­  
нтрация  в устойчиво  състояние  (BCF  SS ), която  се очаква  при 
лабораторни  експерименти . Предварителните  оценки  на коеф­  
ициента  на биоконцентрация  за органични  химикали  с log 
Р ОW -стойности  до около  9,0 могат  да се получат  чрез използване  
на уравнението  на Bintein аt al (2). Параметрите , които  
характеризират  биоконцентрационния  потенциал , включват  
константата  на скорост  на поглъщане  (k  1 ), константата  на 
скорост  на очистване  (k 2 ) и BCF  SS . 
Радиомаркираните  тестови  вещества  могат  да улеснят  анализа  на 
водата  и на пробите  риба  и могат  да се използват  за определяне  
на това, дали  да се прави  идентификация  за израждане  и колич­  
ествена  оценка . Ако се измерят  общите  радиоактивни  отпадъци  
(например  чрез изгаряне  или разтваряне  на тъкани ), то BCF се 
базира  на основното  съединение , на всички  задържани  мета­  
болити , а също  и на асимилирания  въглерод . Коефициентите  
BCF, базирани  на общите  радиоактивни  отпадъци , могат  следов­  
ателно  да се сравняват  директно  с BCF, получен  при спец­  
ифичен  химически  анализ  само  на основното  съединение . 
При радиомаркирани  изследвания  може  да се използват  
процедури  за очистване , за да се определи  BCF, базиран  на 
основното  съединение , а главните  метаболити  се 
охарактеризират , ако се сметне  за необходимо . Възможно  е 
също  да се комбинира  изследване  на метаболизма  при рибите  
с изследване  на биоконцентрацията , чрез анализ  и идент­  
ификация  на отпадъците  в тъканите . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И ЕДИНИЦИ  
Биоконцентрация /биоакумулиране  е увеличението  в конце­  
нтрацията  на тестовото  вещество  във или върху  организъм  
(определени  негови  тъкани ), отнесено  към концентрацията  на 
тестовото  вещество  в заобикалящата  среда . 
Коефициентът  на биоконцентрация  (BCF или K B ) по всяко  
време  на фазата  на поглъщане  в този акумулиращ  тест е конце­  
нтрацията  на тестовото  вещество  във/върху  рибата  или 
определени  нейни  тъкани  (C  f като μg/g (ррm), разделено  на 
концентрацията  на химикала  в окръжаващата  среда  (C  w като 
μg/ml (ррm). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1123
 
Коефициент  на биоконцентрация  в устойчиво  състояние  
(BCF  SS или K B ) не се променя  съществено  за дълъг  период  от 
време , като концентрацията  на тестовото  вещество  в окръжа­  
ващата  среда  през този период  е константа . 
Равна  линия  (плато ), или устойчиво  състояние  на графиката  на 
тестовото  вещество  в рибата  (C  f ) спрямо  времето , се достига , 
когато  кривата  стане  успоредна  на времевата  ос и са 
направени  три успешни  анализа  на C f на проби , взети  на 
интервали  от поне  два дни, които  три анализа  не се отличават  
с повече  от ± 20 % един  от друг , и няма  никакви  съществени  
разлики  между  трите  периода  на вземане  на проба . Когато  се 
анализират  обединени  проби , са необходими  поне  четири  
успешни  анализа . За тестови  вещества , които  са взети  бавно , е 
по-подходящо  интервалите  да бъдат  по седем  дни. 
Коефициентите  на биоконцентрация , изчислени  директно  от 
константите  на кинетичната  скорост  (k 1 /k 2 ), се определят  като 
кинетичен  коефициент  на концентрация , BCF  k . 
Коефициентът  на разпределение  октанол -вода  (P ow ) е съотнош­  
ението  на химичната  разтворимост  в n-октанол  и водата  при 
равновесно  състояние  (метод  А.8), изразяван  също  като K ow . 
Логаритъмът  от P ow се използва  като индикация  на химичния  
потенциал  за биоконцентрация  при водни  организми . 
Фазата  на излагане  или поглъщане  е времето , през което  рибата  
е изложена  на въздействието  на тестовия  химикал . 
Константата  на скорост  на поглъщане  (k  1 ) е цифровата  
стойност , определяща  скоростта  на нарастване  на конце­  
нтрацията  на тестовото  вещество  във/върху  рибата , подложена  
на теста  (или определени  нейни  тъкани ), когато  рибата  е 
изложена  на въздействието  на този химикал  (k 1 се изразява  в 
ден  -1 ). 
Фазата  след излагането  или очистването  (загуба ) е времето , 
което  следва  след  прехвърлянето  на тестовата  риба  от среда , 
съдържаща  тестово  вещество , към среда , несъдържаща  такова  
вещество , през което  време  се изследва  очистването  (или 
нетната  загуба ) на веществото  от тестовата  риба  (или 
определени  нейни  тъкани ). 
Константа  за скорост  на очистването  (загуба ) (k  2 ) е 
цифровата  стойност , определяща  скоростта  на намаляване  на 
концентрацията  на тестовото  вещество  в тестовата  риба  (или 
определени  нейни  тъкани ), следваща  прехвърлянето  на 
тестовата  риба  от среда , съдържаща  тестово  вещество , към 
среда , несъдържаща  такова  вещество  (k 2 се изразява  в ден  -1 ). 
1.3. ПРИНЦИП  НА ТЕСТОВИЯ  МЕТОД  
Тестът  се състои  от две фази : фаза  на излагане  на въздействие  
(поглъщане ) и фаза  след  излагане  (очистване ). По време  на 
фазата  на поглъщането  отделни  групи  риба  от един  вид се 
излагат  на поне  две концентрации  на тестовото  вещество . 
След  това те се прехвърлят  в среда , несъдържаща  тестово  
вещество . Фазата  на очистването  е необходима  винаги , освен  
ако поглъщането  на веществото  по време  на тази фаза  е незнач­  
ително  (например  BCF е по-малко  от 10). Концентрацията  на 
тестовото  вещество  във/върху  рибата  (или определени  нейни  
тъкани ) се проследява  по време  на двете  фази  на теста . Освен  
двете  тестови  концентрации , една  контролна  група  риби  се 
държи  при идентични  условия  с изключение  на отсъствието  на 
тестово  вещество , за да се отнесат  възможните  странични  
ефекти , наблюдавани  при теста  за биоконцентрация , към съотв­  
етната  контролна  група  и да се получат  концентрации  за 
тестовото  вещество . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1124
 
Фазата  на поглъщането  протича  28 дни, освен  ако не се 
установи , че равновесието  е достигнато  по-рано . Предвиждане  
за дължината  на фазата  на поглъщането  и времето  за достигане  
на устойчиво  състояние  може  да се направи  на база уравнението  
от приложение  3. След  това започва  периодът  за очистване , като 
рибата  се прехвърля  към същата  среда , но без тестово  вещество , 
в друг  чист  съд. Когато  е възможно , коефициентът  на биоконце­  
нтрация  се изчислява , за предпочитане  както  чрез съотнош­  
ението  (BCF  SS ) на концентрацията  на рибата  (C  f ) и във водата  
(C w ) при видимо  устойчиво  състояние , така и като коефициент  
за кинетична  биоконцентрация  (BCF  k ), като съотношение  на 
константите  на скоростта  на поглъщането  (k 1 ) и очистването  
(k 2 ), приемайки  кинетика  от първи  ред. Ако не се получава  с 
кинетика  от първи  ред, се използват  по-сложни  модели  
(приложение  5). 
Ако устойчивото  състояние  не се постигне  за 28 дни, фазата  на 
поглъщането  се удължава , докато  се постигне  устойчиво  
състояние , или за още 60 дни, в зависимост  от това кое ще се 
случи  по-напред ; след  това започва  фазата  на очистването . 
Константите  на скоростта  на поглъщането , на очистването  
(загуба ) (или константите , при които  се използват  по-сложни  
модели ), коефициентът  на биоконцентрация  и, когато  е 
възможно , доверителните  граници  на всеки  един  от тези 
параметри  се изчисляват  от модела , който  най-добре  описва  
измерените  концентрации  на тестовото  вещество  в рибата  и 
водата . 
BCF се изразява  като функция  на общото  мокро  тегло  на рибата . 
За специални  цели  обаче  определени  тъкани  или органи  
(например  мускули , черен  дроб ) могат  да се използват , ако 
рибата  е достатъчно  голяма  или може  да се раздели  на ядивна  
част (филе ) и неядивна  част (вътрешности ). Тъй като при много  
органични  вещества  има ясна  връзка  между  потенциала  за 
биоконцентрация  и липофилността , то има също  и съответна  
връзка  между  липидното  съдържание  на тестовата  риба  и набл­  
юдаваната  биоконцентрация  на такива  вещества . Следователно , 
за да се намали  този източник  на променливост  в тестовите  
резултати  за веществата  с висока  липофилност  (т.е. с log P  ow 
> 3), биоконцентрацията  се изразява  по отношение  на липидно  
съдържание  като допълнение  към цялото  телесно  тегло . 
Липидното  съдържание  се определя  върху  същия  биологичен  
материал , който  се използва  за определяне  на концентрацията  
на тестовото  вещество , когато  това е възможно . 
1.4. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ТЕСТОВОТО  ВЕЩЕСТВО  
Преди  провеждането  на теста  за биоконцентрация  трябва  да се 
знае следната  информация  за тестовото  вещество : 
— разтворимост  във вода ; 
— коефициент  на разпределение  октанол -вода  P ow (обозначаван  
също  като K ow , определен  чрез HPLC метода  в А.8); 
— хидролиза ; 
— фототрансформация  във вода , определена  при слънчево  
лъчене  или при условия , симулиращи  слънчево  лъчене , и 
при условия  на лъчене  на теста  за биоконцентрация  (3); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1125
 
— повърхностно  напрежение  (т.е. за вещества , при които  log 
P ow не може  да се определи ); 
— парно  налягане ; 
— готово  биологично  разграждане  (когато  е уместно ). 
Друга  необходима  информация  е токсичността  към рибните  
видове , която  се използва  в теста , за предпочитане  асимптотичен  
LC 50 (т.е. независим  по време ). Необходими  са подходящ  анал­  
итичен  метод , с позната  точност , прецизност  и чувствителност , 
за количественото  определяне  на тестовото  вещество  в тестовите  
разтвори  и биологичен  материал , заедно  с подробности  за подг­  
отовката  на пробата  и нейното  съхранение . Аналитичната  
граница  за детекция  на тестовото  вещество  както  във вода , 
така и в рибните  тъкани , трябва  също  да се познават . Когато  
се използва  14 С маркирано  тестово  вещество , трябва  да се знае 
процентът  радиоактивност , свързан  с примесите . 
1.5. ВАЛИДНОСТ  НА ТЕСТА  
За да бъде  валиден  един  тест, трябва  да се прилагат  следните  
условия : 
— температурното  колебание  да е по-малко  от ± 2  o С, 
— концентрацията  на разтворения  кислород  да не пада  под 
60 % насищане , 
— концентрацията  на тестовото  вещество  в камерите  да се 
поддържа  в рамките  на ±20 % от усреднените  величини  на 
измерените  стойности  по време  на фазата  на поглъщане , 
— смъртността  или други  странични  ефекти /болести  както  в 
контролната , така и в обработваната  риба  да е по-малка  от 
10 % в края  на теста ; когато  тестът  продължи  повече  от 
няколко  седмици  или месеци , смъртността  или други  
странични  ефекти  в двата  комплекта  риба  да е по-малка  от 
5 % за месец  и да не превишава  общо  30 %.  
1.6. ЕТАЛОННИ  СЪЕДИНЕНИЯ  
Използването  на еталонни  съединения  с познат  биоконце­  
нтрационен  потенциал  би било  полезно  при проверката  на 
експерименталната  процедура , когато  е необходимо . Спец­  
ифични  вещества  обаче  все още не могат  да се препоръчат . 
1.7 ОПИСАНИЕ  НА ТЕСТОВИЯ  МЕТОД  
1.7.1.  Апаратура  
Трябва  внимателно  да се избягва  използването  на материали  за 
всички  части  от оборудването , които  могат  да разтворят , 
абсорбират  или разтопят  и да окажат  страничен  ефект  върху  
рибата . Могат  да се използват  стандартни  правоъгълни  или 
цилиндрични  резервоари , изработени  от химически  инертен  
материал , с подходящ  обем  спрямо  скоростта  на зареждане . За 
предпочитане  е да се използва  Teflon (R), неръждаема  стомана  
и/или стъклени  тръби , а използването  на тръби  от мека  
пластмаса  да се ограничи  до минимум . Опитът  показва , че за 
вещества  с високи  коефициенти  на абсорбция , като синтетични  
пиретроиди  например , може  да се изисква  използването  на 
силикатни  стъкла . В такива  ситуации  оборудването  трябва  да 
се изхвърли  след  употреба . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1126
 
1.7.2.  Вода  
Обикновено  в теста  се използва  натурална  вода , която  се взема  
от незамърсен  източник  с постоянно  качество  на водата . Водата  
за разреждане  трябва  да има качество , което  да позволява  
оцеляването  на избраните  видове  риба  за периодите  на аклим­  
атизация  и тест, без те да показват  необичаен  външен  вид или 
поведение . В идеалния  случай  трябва  да се демонстрира , че 
тестовите  видове  могат  да оцеляват , да растат  и да се 
възпроизвеждат  в разреждащата  вода  (например  в лабораторна  
култура  или тест за токсичност  при жизнен  цикъл ). Водата  
трябва  да се характеризира  поне  чрез рН, твърдост , общо  
съдържание  на твърди  частици , общо  съдържание  на 
органичен  въглерод  и, за предпочитане , амониеви  йони , 
нитрит  и алкалност , а за морските  видове  — и соленост . Парам­  
етрите , които  са важни  за оптималното  физическо  състояние , са 
напълно  известни , но приложение  1 дава препоръчителните  
максимални  концентрации  за определен  брой  параметри  за 
тест при сладководни  басейни  и морски  води . 
Водата  трябва  да има постоянно  качество  по време  на целия  
период  на теста . Нейната  рН трябва  да е в границите  от 6,0 
до 8,5, но по време  на даден  тест тя трябва  да е в границите  
на ± 0,5 рН единици . С цел да се обезпечи , че разреждащата  
вода  няма  да повлияе  прекомерно  върху  резултата  от теста  
(например  чрез образуване  на комплексни  съединения  с 
тестовото  вещество ) или да окаже  странично  въздействие  
върху  качествата  на семейството  риби , на определени  
интервали  трябва  да се вземат  проби  за анализ . Определянето  
на тежки  метали  (например  Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni), главни  
аниони  и катиони , (например  Са, Mg, Na, K, Cl, SO  4 ), 
пестициди  (например  общо  органофосфорни  и общо  органо­  
хлорни  пестициди ), общо  органичен  въглерод  и суспендирали  
твърди  частици  трябва  да се прави , например , на всеки  три 
месеца , когато  се знае, че разреждащата  вода  има относително  
постоянно  качество . Ако се установи , че качеството  на водата  е 
постоянно  за период  от поне  една  година , тези определяния  
могат  да се правят  по-рядко  и интервалите  да се удължат  
(примерно  на всеки  шест  месеца ). 
Съдържанието  на природни  частици , а също  и общото  
съдържание  на органичен  въглерод  (ТОС ) на разредената  вода  
трябва  да е възможно  най-ниско , за да се избегне  абсорбция  на 
органична  материя  от тестовото  вещество , която  може  да 
намали  неговата  биологична  степен  на абсорбция  (4). Макс­  
имално  допустимата  стойност  е 5 mg/l за определено  
конкретно  вещество  (сухо  вещество , непреминаващо  през 
0,45 μm филтър ) и 2 mg/1 за общото  количество  органичен  
въглерод  (вж. приложение  1). Ако е необходимо , водата  се 
филтрира  преди  употреба . Приносът  на органичния  въглерод  
във водата  от тестовата  риба  (екскрети ) и от хранителните  
остатъци  трябва  да е възможно  най-нисък . По време  на теста  
концентрацията  на органичен  въглерод  в тестовия  съд не трябва  
да превишава  концентрацията  на органичен  въглерод , получаван  
от тестовото  вещество , и на разтварящия  агент , ако се използва  
такъв , с повече  от 10 mg/1 (± 20 %).  
1.7.3.  Тестови  разтвори  
Приготвя  се основен  разтвор  от тестовото  вещество  в подходяща  
концентрация . Той се приготвя  чрез просто  смесване  или 
разбъркване  на тестовото  вещество  в разреждаща  вода . Не се 
препоръчва  употребата  на разтворители  или диспергиращи  агенти  
(разтварящи  агенти ); това обаче  може  да се получи  в някои  случаи  с 
цел да се направи  подходящо  концентриран  основен  разтвор . Могат  
да се използват  следните  разтворители : етанол , метанол , етиле­  
нгликол  монометилетер , етиленгликол  диметилетер , димет­  
илформамид  и триетиленгликол . Като  диспергиращи  агенти  могат  
да се използват  Cremophor RH40, Tween 80, метилцелулоза  0,01 % и 
НСО -40. Трябва  да се внимава , когато  се използват  агенти  с лесно  
биоразграждане , тъй като те могат  да причинят  проблеми  при 
бактериалния  растеж  в проточните  тестове . Тестовото  вещество  
може  да бъде  радиомаркирано  и трябва  да има най-голямата  
чистота  (например  за предпочитане  > 98 %).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1127
 
За проточни  тестове  се изисква  система , която  непрекъснато  
дозира  и разрежда  основен  разтвор  от тестовото  вещество  
(например  дозираща  помпа , пропорционален  разредител , 
система  за насищане ) и го изпраща  към тестовите  камери . 
Допускат  се поне  пет замествания  на обема  на ден през всяка  
тестова  камера . Проточният  метод  е за предпочитане , но където  
това не е възможно  (например  когато  тестовите  организми  са 
подложени  на неблагоприятно  въздействие ), може  да се 
използва  полустатичната  техника , при условие  че са удовлет­  
ворени  критериите  за валидност . Дебитите  на основните  
разтвори  и разреждащата  вода  се проверяват  48 часа преди  
теста  и след  това поне  веднъж  на ден по време  на теста . Тази  
проверка  включва  определянето  на дебита  през всяка  камера  и 
следенето  да не варира  с повече  от 20 % както  във, така и извън  
камерите . 
1.7.4.  Избор  на видове  
Важни  критерии  при избора  на видове  са те да са достъпни , да 
могат  да се получат  с необходимите  размери  и да могат  да се 
гледат  в лабораторни  условия . Другите  критерии  при избора  на 
видове  риба  включват  развлекателното , търговското  и еколог­  
ичното  значение , а също  и сравнима  чувствителност , успешна  
употреба  в миналото  и т.н. 
Препоръчваните  видове  риба  са дадени  в приложение  2. Могат  
да се използват  и други  видове , но може  да се наложи  
адаптиране  на тестовата  процедура  за постигане  на подходящи  
тестови  условия . В този случай  се докладват  обосновката  за 
избора  на видовете  и експерименталният  метод . 
1.7.5.  Хващане  на рибата  
Аклиматизирайте  основната  популация  риба  за поне  две 
седмици  във вода  при тестова  температура  и я хранете  дост­  
атъчно  добре , на същия  хранителен  режим , на който  ще бъде  
и по време  на теста . 
След  48-часов  период  се отчита  смъртността  и се прилагат  
следните  критерии : 
— при смъртност , по-голяма  от 10 % за седем  дни: откажете  
цялата  партида , 
— при смъртност  между  5 и 10 % за седем  дни: аклим­  
атизирайте  още седем  дни, 
— при смъртност , по-малка  от 5 % за седем  дни: приемете  
партидата ; ако смъртността  през втората  седмица  надвиши  
5 %, откажете  цялата  партида . 
Уверете  се, че рибата , която  използвате  при тестовете , не страда  
от видими  болести  и отклонения . Изхвърлете  болната  риба . 
Рибата  не трябва  да бъде  лекувана  от болести  две седмици  
преди  теста  или по време  на теста . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1128
 
1.8. ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТА  
1.8.1.  Предварителен  тест  
Би било  полезно  да се извърши  един  предварителен  експеримент  
с цел да се оптимизират  тестовите  условия  на окончателния  
тест, например  изборът  на концентрация (и) на тестовото  
вещество , продължителност  на фазите  на поглъщане  и 
очистване . 
1.8.2.  Условия  на експозиция  
1.8.2.1. П р о д ъ л ж и т е л н о с т н а ф а з а т а н а п о г л ъ щ а н е 
Предвиждане  за продължителността  на фазата  на поглъщане  
може  да се направи  на база практически  опит  (например  от 
предишно  изследване  или химикал , свързан  с акумулиране ) 
или от определени  емпирични  взаимовръзки , използващи  
познания  относно  водоразтворимостта  или коефициента  на 
разпределение  на октанол /вода  на тестовото  вещество  (вж. 
приложение  3). 
Фазата  на поглъщане  трае 28 дни, освен  ако не се установи , че 
равновесието  е постигнато  по-рано . Ако устойчивото  състояние  
не се постигне  за 28 дни, фазата  на поглъщане  трябва  да се 
удължи , докато  се постигне  устойчиво  състояние  или с още 60 
дни, в зависимост  от това кое ще се случи  по-напред . 
1.8.2.2. П р о д ъ л ж и т е л н о с т н а ф а з а т а н а о ч и с т в а н е т о 
Обикновено , за да се получи  подходящо  (например  95 %) 
намаляване  на веществото  в тялото  на рибата  (вижте  
приложение  3 за обяснение  на оценката ), е необходим  период  
от време  на половината  от периода  на поглъщане . Ако времето , 
необходимо  за да се постигне  95 % загуба , е прекалено  дълго , 
превишаващо  два пъти  нормалната  продължителност  на фазата  
на поглъщане  (т.е. повече  от 56 дни), може  да се използва  по- 
къс период  (т.е. докато  концентрацията  на тестовото  вещество  
стане  по-малко  от 10 % от концентрацията  в устойчиво  
състояние ). Обаче  за вещества , които  имат  по-сложни  схеми  
на поглъщане  и очистване , отколкото  са тези, представени  
чрез модел  риба  от една  категория , даващи  кинетика  от първи  
ред, трябва  да се оставят  по-дълги  фази  на очистване  за да се 
определят  константите  за загуба  на скорост . Периодът  може  да 
се регулира  чрез периода , през който  концентрацията  на 
тестовото  вещество  в рибата  остава  над аналитичния  лимит  на 
детекция . 
1.8.2.3. Б р о й н а т е с т о в и т е р и б и 
Подберете  такъв  брой  риби  за теста , че да има минимум  по 4 
риби  за проба  при всяко  вземане  на проба . Ако са необходими  
повече  статистически  данни , ще трябват  и повече  риби  за проба . 
Ако се използват  възрастни  риби , отчетете  какви  се използват  в 
експеримента  — мъжки , женски  или смесени . Ако се използват  
риби  и от двата  пола , разликите  в липидното  съдържание  между  
половете  се документира  като незначително  преди  началото  на 
излагането ; може  би ще е необходимо  събирането  на мъжките  и 
женските  риби . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1129
 
За всеки  един  тест се избират  риби  с близко  тегло , така че най- 
малките  да не са по-малки  от две трети  теглото  на най-големите . 
Рибите  трябва  да са от един  и същи  годишен  клас и от един  и същи  
източник . Понеже  теглото  и възрастта  на една  риба  понякога  оказва  
значително  влияние  върху  BCF-стойностите  (1), тези подробности  
се записват  акуратно . Препоръчва  се по-малка  проба  риби  да се 
измери  преди  теста , за да се прецени  средното  тегло . 
1.8.2.4. З а р е ж д а н е 
Използват  се високи  съотношения  вода  към риба , за да се 
намали  до минимум  намаляването  на C  w , причинено  от 
прибавянето  на риба  в началото  на теста , а също  за да се 
избегне  намаляване  на концентрацията  на разтворения  
кислород . Важно  е скоростта  на зареждане  да е подходяща  
спрямо  използваните  видове  за теста . При всички  случаи  
скорост  на зареждане  от 0,1 до 1,0 g риба  (мокро  тегло ) за 
литър  вода  на ден е нормално  препоръчваната  скорост . По- 
високи  скорости  могат  да се използват , ако се установи , че 
желаната  концентрация  на тестовото  вещество  може  да се 
поддържа  в рамките  на ± 20 % и че концентрацията  на разт­  
ворения  кислород  не пада  под 60 % насищане . 
При подбора  на подходящи  режими  на зареждане  се отчита  
нормалният  хабитат  на рибите . Например  дънните  риби  може  
да изискват  повече  място  на дъното  на аквариума  за същия  
обем  вода  в сравнение  с пелагичните  видове . 
1.8.2.5. Х р а н е н е 
По време  на аклиматизационния  и тестовия  период  хранит­  
елният  режим  на рибата  е на база познато  съдържание  на 
липиди  и протеини  при количество , достатъчно  да я поддържа  
здрава  и да запазва  теглото  ѝ. През  тези периоди  рибата  дневно  
се храни  с количества  от 1 до 2 % от телесеното  ѝ тегло ; това 
поддържа  липидната  концентрация  на постоянно  ниво  по време  
на теста  при повечето  видове  риби . Количеството  храна  се 
преизчислява , например  веднъж  седмично , за да може  да се 
поддържа  постоянно  телесно  тегло  и липидно  съдържание . За 
целите  на това изчисление  теглото  на рибата  във всяка  тестова  
камера  се пресмята  на база теглото  на рибата , тествана  
напоследък  в тази камера . Не претегляйте  теглото  на рибата , 
останала  в камерата . 
Неконсумираната  храна  и изпражненията  се източват  ежедневно  
от камерите  малко  след  храненето  (30 минути  до 1 час). 
Камерите  се поддържат  колкото  е възможно  най-чисти  по 
време  на теста , така че концентрацията  на органично  вещество  
да е възможно  най-ниска , тъй като присъствието  на органичен  
въглерод  може  да ограничи  биологичната  годност  на тестовото  
вещество  (1). 
Понеже  много  от храненията  са получени  от рибно  месо , то те 
се анализират  за тестовото  вещество . Желателно  е също  да се 
анализират  за пестициди  и тежки  метали . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1130
 
1.8.2.6. С в е т л и н а и т е м п е р а т у р а 
Фотопериодът  обикновено  е от 12 до 16 часа, а температурата  
(± 2  o С) трябва  да е подходяща  за тестовите  видове  (вж. 
приложение  2). Типът  и характеристиките  на осветлението  
трябва  да са познати . Трябва  да се внимава  относно  възможната  
фототрансформация  на тестовото  вещество  при условията  на 
лъчението  на изследването . Използва  се подходящо  осветление , 
за да се избегне  излагане  на рибата  на неестествени  
фотопродукти . В някои  случаи  може  да е подходяща  употребата  
на екран , ограничаващ  ултравиолетовите  излъчвания  под 
290 nm.  
1.8.2.7. Т е с т о в и к о н ц е н т р а ц и и 
Рибата  се излага  на проточни  условия  при поне  две конце­  
нтрации  на тестовото  вещество  във водата . Обикновено  по- 
високата  (или най-високата ) концентрация  се избира  да бъде  
около  1 % от нейната  силна  асимптотична  LC  50 и поне  10 
пъти  по-висока  от нейния  лимит  на детекция  във вода  чрез 
използвания  аналитичен  метод . 
Най-високата  тестова  концентрация  може  също  да бъде  
определена  чрез разделяне  на силната  96 h LC  50 при 
подходящото  съотношение  силна /продължителна  (подходящи  
съотношения  за някои  химикали  могат  да бъдат  от 3 до 100). 
Ако е възможно , изберете  друга  концентрация (и), така че тя да 
се различава  от горната  с коефициент  10. Ако това не е 
възможно  поради  критерия  1 % от LC  50 и аналитичния  лимит , 
може  да се използва  коефициент  или да се разглежда  
използването  на 14 С маркирано  тестово  вещество . Нито  една  
от използваните  концентрации  не трябва  да е над разт­  
воримостта  на тестовото  вещество . 
Когато  се използва  разтварящ  агент , неговата  концентрация  не 
трябва  да е по-голяма  от 0,1 ml/l и трябва  да бъде  една  и съща  
във всички  тестови  съдове . Неговият  принос , заедно  с тестовото  
вещество , към общото  съдържание  на органичен  въглерод  в 
тестовата  вода  трябва  да е познат . Необходимо  е обаче  да се 
положат  максимални  усилия  за избягване  употребата  на такива  
материали . 
1.8.2.8. К о н т р о л н и п р о в е р к и 
Една  контролна  проверка  на разреждащата  вода  или, ако е 
уместно , на разтварящия  агент  се извършва  допълнително  към 
тестовите  серии , при условие  че е установено , че агентът  няма  
въздействия  върху  рибата . Ако не е така, се залагат  и двете  
контролни  проверки . 
1.8.3.  Честота  на измерванията  на чистотата  на водата  
По време  на теста  разтвореният  кислород , ТОС , рН и 
температурата  се измерват  във всички  съдове . Общата  
твърдост  и соленост , ако е уместно , се измерват  при 
контролните  проверки  и един  съд с по-висока  (или най- 
високата ) концентрация . Като  минимум  разтвореният  кислород  
и солеността , ако е уместно , се измерват  3 пъти  — в началото , 
около  средата  и в края  на периода  на поглъщане  — и веднъж  
седмично  в периода  на очистване . ТОС  се измерва  в началото  на 
теста  (24 часа и 48 часа преди  началото  на теста  във фазата  на 
поглъщане ). Температурата  се измерва  ежедневно , рН — в 
началото  и края  на всеки  период , а твърдостта  — веднъж  за 
всеки  тест. Желателно  е температурата  да се контролира  
непрекъснато  поне  в един  съд. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1131
 
1.8.4.  Вземане  на проба  и анализ  на рибата  и водата  
1.8.4.1. П р о г р а м а з а в з е м а н е н а п р о б а н а в о д а и р и б а 
Проба  от водата  от тестовите  камери  за определяне  на конце­  
нтрацията  на тестовото  вещество  се взема  преди  слагането  на 
рибата  и по време  както  на фазата  на поглъщане , така и на 
фазата  на очистване . Като  минимум  проба  от водата  се взема  
по същото  време , когато  се взема  от рибата , и преди  хранене . 
По време  на фазата  на поглъщане  се определят  концентрациите  
на тестовото  вещество , за да се провери  съответствието  с 
критериите  за валидност . 
Проба  от рибата  се взема  поне  при пет случая  през фазата  на 
поглъщане  и поне  при четири  през фазата  на очистване . Тъй 
като при някои  случаи  ще бъде  трудно  да се пресметне  една  
сравнително  точна  преценка  на стойността  на BCF на база 
броя  на пробите , особено  когато  се използва  друга  кинетика  
освен  простата  кинетика  за очистване  от първи  ред, то може  
би е препоръчително  да се вземат  проби  по-често  и в двата  
периода  (вж. приложение  4). По-голямото  количество  взети  
проби  се съхранява  и анализира  само  ако резултатите  от 
първия  кръг  анализи  докажат , че не се адекватни  за изчис­  
лението  на BCF c желаната  точност . 
Пример  за приемлива  програма  за вземане  на проби  е даден  в 
приложение  4. Могат  да се изчислят  и други  програми , с 
помощта  на други  приети  стойности  на P ow , за да се изчисли  
времето  за излагане  при 95 % поглъщане . 
Вземането  на проби  продължава  през фазата  на поглъщането  до 
установяване  на устойчивото  състояние  или 28 дни, в 
зависимост  от това кое се случва  по-напред . Ако устойчивото  
състояние  не се постигне  за 28 дни, вземането  на проби  продъ­  
лжава , докато  се постигне  или още 60 дни, в зависимост  от това 
кое се случва  по-напред . Преди  началото  на фазата  на 
очистването  рибата  се прехвърля  в чисти  резервоари . 
1.8.4.2. В з е м а н е н а п р о б а и п о д г о т о в к а н а п р о б а т а 
Анализите  на водните  проби  се получават , например , чрез 
източване  през инертни  тръби  от централната  точка  в 
тестовата  камера . Понеже  нито  филтрирането , нито  центроф­  
угирането  могат  винаги  да отделят  фракцията  от тестовото  
вещество , която  не е биологично  годна , от тази, която  е 
(особено  за суперлипофилни  химикали , т.е. онези  химикали  с 
log P  ow > 5) (1) (5), пробите  може  да не са обекти  на такова  
третиране . 
Вместо  това се правят  измервания , за да се поддържат  
резервоарите  колкото  е възможно  най-чисти  и общото  
съдържание  на органичен  въглерод  се контролира  и през двете  
фази  — на поглъщане  и на очистване . 
Подходящ  брой  риби  (нормално  минимум  четири ) се изваждат  
от тестовите  камери  при всяко  вземане  на проби . Тези  риби  се 
изплакват  бързо  с вода , изсушават  се и се убиват  моментално  
чрез най-подходящия  и хуманен  метод , след  което  се претеглят . 
Желателно  е рибата  и водата  да се анализират  веднага  след  
вземането  на проба  с цел да се избегне  разлагането  или други  
загуби  и да се изчислят  приблизителните  скорости  на поглъщане  
и очистване , докато  тестът  продължава . Незабавните  анализи  
избягват  закъснението , когато  се достига  равната  част 
(платото ) на кривата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1132
 
Ако не се извършат  незабавни  анализи , пробите  се съхраняват  
по подходящ  метод . Преди  началото  на изследването  се проучва  
информацията  относно  подходящи  методи  за съхранение  на 
конкретното  тестово  вещество  — например  дълбоко  
замразяване , съхранение  при 4  o С, продължителност  на 
съхранението , екстракция  и др. 
1.8.4.3. К а ч е с т в о н а а н а л и т и ч н и я м е т о д 
Понеже  цялата  процедура  се обуславя  по същество  от точността , 
прецизността  и чувствителността  на аналитичния  метод , 
използван  за тестовото  вещество , проверете  експериментално  
дали  прецизността  и възпроизводимостта  на химичния  анализ , 
а също  и възстановяването  на тестовото  вещество  от водата  и 
рибата  са задоволителни  за конкретния  метод . Проверете  също  
тестовото  вещество  да не е забележимо  в използваната  
разреждаща  вода . 
Ако е необходимо , стойностите  на C w и C f , получени  при теста , 
се коригират  за стойностите  на възстановяване  и подготовка  от 
контролните  проверки . С пробите  вода  и риба  се борави  по 
начин , който  намалява  до минимум  замърсяването  и загубите  
(които , например , могат  да се получат  при абсорбция  от 
устройството  за вземане  на проба ). 
1.8.4.4. А н а л и з н а п р о б а т а р и б а 
Ако при теста  се използват  радиомаркирани  материали , може  да 
се анализира  общата  радиомаркировка  (т.е. източник  и мета­  
болити ) или пробите  може  да се почистят  така, че основното  
съединение  да се анализира  отделно . Също  така основните  мета­  
болити  може  да се охарактеризират  при устойчиво  състояние  
или в края  на фазата  на поглъщането , в зависимост  от това 
кое се случва  по-напред . Ако BCF по отношение  на общите  
радиомаркирани  остатъци  е ≥ 1 000 %, може  би е желателно , а 
за някои  категории  химикали , като пестициди  — силно  
препоръчително , да се идентифицират  и определят  количествено  
продуктите  на разпадането , представляващи  ≥ 10 % от общите  
остатъци  в рибните  тъкани  при устойчиво  състояние . Ако прод­  
уктите  на разпадането , представляващи  ≥ 10 % от общите  радио­  
маркирани  остатъци  в рибните  тъкани , са идентифицирани  и 
определени  количествено , тогава  се препоръчва  да се направи  
същото  и за продуктите  на разпадането  в тестовата  вода . 
Концентрация  на тестовото  вещество  обикновено  се определя  за 
всяка  отделна  претеглена  риба . Ако това не е възможно , се прави  
събиране  на пробите  при всяко  вземане  на проба , но това 
ограничава  статистическите  процедури , които  могат  да се 
приложат  към данните . Ако една  статистическа  процедура  
представлява  важен  фактор , тогава  в теста  се включват  достатъчен  
брой  риби , за да се пригоди  желаната  процедура  на събиране  (6) (7).  
BCF се изразява  едновременно  като функция  на общото  мокро  
тегло , а за високолипофилни  вещества  — като функция  на 
липидното  съдържание . Липидното  съдържание  при рибата  се 
определя  при всяко  вземане  на проба , когато  е възможно . За 
определянето  му се използват  подходящи  методи  (препратки  8 
и 2 от приложение  3). Екстракционната  техника  за хлороформ /­ 
метанол  може  да се препоръча  като стандартен  метод  (9). Разл­  
ичните  методи  не дават  идентични  стойности  (10), така че е 
важно  да се дадат  подробности  за използвания  метод . Когато  е 
възможно , анализът  за липиди  се прави  върху  същия  екстракт  
като този, произведен  за анализа  за тестовото  вещество , понеже  
липидите  често  трябва  да се отстраняват  от екстракта , преди  той 
да бъде  анализиран  хроматографски . Липидното  съдържание  на 
рибата  (в mg/kg мокро  тегло ) в края  на експеримента  не трябва  
да се различава  от това в началото  с повече  от ± 25 %. Отчита  се 
също  и процентното  съдържание  на твърди  частици  в тъканите , 
за да се позволи  превръщане  на липидната  концентрация  от 
мокра  на суха  база. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1133
 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Кривата  на поглъщането  на тестовото  вещество  се получава  чрез 
изчертаване  на нейната  концентрация  във/върху  рибата  (или 
определени  тъкани ) във фазата  на поглъщането  спрямо  
времето  в аритметични  скали . Ако кривата  достигне  стабилно  
равнище , това означава  да бъде  приблизително  асимптотична  
към времевата  ос, устойчивото  състояние  BCF  SS се изчислява  
от: 
C f като  устойчиво  състояние ðсредноÞ 
C w като  устойчиво  състояние ðсредноÞ 
Когато  не се достига  устойчиво  състояние , може  би е възможно  
да се изчисли  BCF  SS c достатъчна  точност  за оценка  на риска  от 
„устойчиво  състояние “ при 80 % (1,6/k  2 ) или 95 % (3,0/k  2 ) на 
равновесието . 
Определя  се също  и коефициентът  на концентрация  (BCF  k ) като 
съотношение  k 1 /k 2 , двете  кинетични  константи  от първи  ред. 
Константата  за скорост  на очистване  (kg) обикновено  се 
определя  от кривата  на очистването  (т.е. графиката  на 
намалението  на концентрацията  на тестовото  вещество  в 
рибата  спрямо  времето ). След  това константата  за скорост  на 
поглъщане  (k 1 ) се изчислява  при дадена  k 2 и стойност  на C f , 
която  се получава  от кривата  на поглъщането  (вж. също  
приложение  5). Предпочитаният  метод  за получаване  на BCF  k 
и константите  за скорост  k 1 и k 2 е да се използват  нелинейни  
параметрични  изчислителни  методи  на компютър  (11). В 
противен  случай  за изчисление  на k 1 и k 2 могат  да се 
използват  графичните  методи . Ако кривата  на очистването  
очевидно  не е от първи  ред, се прилагат  по-сложни  модели  
(вж. позоваванията  в приложение  3) и се търси  консултация  от 
статистик  в областта  на биологията . 
2.2. ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Резултатите  трябва  да се тълкуват  с внимание , когато  
измерените  концентрации  на тестовите  разтвори  са на нива , 
близки  до лимита  на детекция  на аналитичния  метод . 
Ясно  определените  криви  на поглъщане  и загуби  са показател  за 
биоконцентрационни  данни  с добро  качество . Вариациите  в 
константите  поглъщане /очистване  между  двете  тестови  конце­  
нтрации  трябва  да бъдат  по-малки  от 20 %. Наблюдаваните  
значителни  разлики  в скоростите  при поглъщане /очистване  
между  двете  приложени  тестови  концентрации  трябва  да се 
отчетат  и да получат  възможно  обяснение . Обикновено  
границата  на достоверност  на BCF при добре  направени  
изследвания  доближава  ± 20 %.  
3. ОТЧИТАНЕ  
Протоколът  от теста  трябва  да включва  следната  информация : 
3.1. ТЕСТОВО  ВЕЩЕСТВО  
— физическо  естество  и където  е уместно , физикохимични  
свойства , 
— химическа  идентификация  (включително  съдържание  на 
органичен  въглерод , ако е уместно ), 
— ако е радиомаркирано , точно  положение  на маркирания (те) 
атом (и) и процент  на радиоактивността , свързана  с прим­  
есите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1134
 
3.2. ТЕСТОВИ  ВИДОВЕ  
— научно  име, род, източник , всякаква  предварителна  
обработка , аклиматизация , възраст , размер  и т.н. 
3.3. ТЕСТОВИ  УСЛОВИЯ  
— използвана  тестова  процедура  (например  проточна  или 
полустатична ), 
— тип и характеристики  на използваното  осветление  и 
фотопериода (ите), 
— тестов  дизайн  (например  брой  и размер  на тестовите  камери , 
скорост  на подмяна  на обема  вода , брой  на възпроизвежда­  
нията , брой  на тестовите  концентрации , време  на поглъщане  
и време  на очистване , честота  на вземане  на проби  от риба  и 
вода ), 
— метод  на подготовка  на наличните  разтвори  и честота  на 
подновяването  им (разтварящият  агент , неговата  конце­  
нтрация  и приносът  му към съдържанието  на органичен  
въглерод  в тестовата  вода  трябва  да се посочат , когато  се 
използват ), 
— номинални  тестови  концентрации , средни  величини  на 
измерваните  стойности  и техните  стандартни  отклонения  в 
тестовите  съдове  и метод , по който  са получени , 
— източник  на разреждаща  вода , описание  на всякаква  
предварителна  обработка , резултати  от всякакви  демо­  
нстрации  на способността  на рибата  да живее  във водата  и 
характеристики  на водата : рН, твърдост , температура , конце­  
нтрация  на разтворен  кислород , остатъчни  нива  на хлор  (ако 
се измерват ), общо  съдържание  на органичен  въглерод , 
суспензирали  твърди  частици , соленост  на тестовата  среда  
(ако е уместно ) и всякакви  други  направени  измервания , 
— качество  на водата  в тестовите  съдове , рН, твърдост , ТОС , 
температура  и концентрация  на разтворен  кислород , 
— подробна  информация  за храненето  (например  тип на 
храната , източник , състав  — поне  липидното  и протеиновото  
съдържание , ако е възможно , количеството , което  се дава, и 
на какви  интервали ), 
— информация  за обработката  на пробите  риба  и вода , включ­  
ително  подробности  от подготовката , съхранението , 
екстракцията  и аналитичните  процедури  (и прецизност ) за 
тестовото  вещество  и липидното  съдържание  (ако се 
измерва ). 
3.4. РЕЗУЛТАТИ  
— резултати  от всякакви  извършени  предишни  изследвания , 
— смъртност  на контролната  риба  и рибата  във всяка  камера  за 
излагане  и всякакво  наблюдавано  необичайно  поведение , 
— липидно  съдържание  на рибата  (ако е определено  при този 
тест), 
— криви  (включително  всички  измерени  данни ), показващи  
поглъщането  и очистването  на тестовия  химикал  в рибата , 
времето  на устойчиво  състояние , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1135
 
— C  f и C w (със стандартно  отклонение  и гама , ако е уместно ) за 
всички  времена  на вземане  на проба  (C  f изразено  в μg/g 
мокро  тегло  (ррm) от цялото  тяло  или определени  негови  
тъкани , например  липиди , и C w в μg/ml (ррm). Стойностите  
не C w за контролните  серии  (произходът  също  се отчита ), 
— биоконцентрационен  коефициент  в устойчиво  състояние  
(BCF  SS ) и/или кинетичен  коефициент  на концентрация  
(BCF  k ) и, ако е приложимо , 95 % граници  на достоверност  
за константите  на скорост  на поглъщане  и очистване  (загуба ) 
(всички  изразени  по отношение  на цялото  тяло  и общото  
липидно  съдържание , ако се измерва , на животното  или 
определени  негови  тъкани ), граници  на достоверност  и 
стандартно  отклонение  (ако има) и методи  на анализ  на 
изчисления /данни  за концентрация  на използваното  тестово  
вещество , 
— когато  се използват  радиомаркирани  вещества  и ако се 
изисква , може  да се даде  натрупването  на всички  открити  
метаболити , 
— всичко  необичайно  относно  теста , всяко  отклонение  от 
тестовите  процедури  и всякаква  друга  уместна  информация . 
Намалете  до минимум  резултати  като „неоткрито  за времето  на 
детекция “, като разработите  предварителен  тестов  метод  и 
експериментален  дизайн , защото  такива  резултати  не могат  да 
се използват  за изчисления  на константите  за скорост . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) Connell D. W. (1988). Bioaccumulation behaviour of 
persistent chemicals with aquatic organisms. Rev. Environ. Contam. Toxicol. 102, pp. 117—156.
 
(2) Bintein S., Devillers J. and Karcher W. (1993). Non-linear 
dependence of fish bioconcentration on n-octanol/water partition coefficient. SAR and QSAR in Environmental Research, 1, pp. 29—390.
 
(3) OECD, Paris (1996). Direct phototransformation of chemicals 
in water. Environmental Health and Safety Guidance Document Series on Testing and Assessment of Chemicals. No 3.
 
(4) Kristensen P. (1991). Bioconcentration in fish: comparison of 
bioconcentration factors derived from OECD and ASTM testing methods; influence of particulate organic matter to the bioavailability of chemicals. Water Quality Institute, Denmark.
 
(5) US EPA 822-R-94-002 (1994) Great Lake Water Quality 
Initiative Technical Support Document for the Procedure to Determine Bioaccumulation Factors. uly 1994.
 
(6) US FDA (Food and Drug Administration) Revision. Pesticide 
analytical manual, 1, 5600 Fisher's Lane, Rockville, MD 
20852, July 1975.  
(7) US EPA (1974). Section 5, A(1). Analysis of Human or animal 
Adipose Tissue, in Analysis of Pesticide Residues in Human 
and Evironmental Samples, Thompson J. F. (ed.) Research 
Triangle Park, N.C. 27711.  
(8) Compaan H. (1980) in 'The determination of the possible 
effects of chemicals and wastes on the aquatic environment: degradation, toxicity, bioaccumulation©, Ch. 
2.3, Part II. Government Publishing Office, the Hague, Nether ­
lands.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1136
 
(9) Gardner et al, (1995). Limn. & Oceanogr. 30, pp. 1099—1105.  
(10) Randall R. C, Lee H., Ozretich R. J., Lake J. L. and Pruell R. 
J. (1991). Evaluation of selected lipid methods for normalising 
pollutant bioaccumulation. Envir. Toxicol. Chem. 10, pp 1431—1436.
 
(11) CEC, Bioconcentration of chemical substances in fish: the 
flow-through method- Ring Test Programme, 1984 to 
1985. Final report March 1987. Authors: P. Kristensen and 
N. Nyholm.  
(12) ASTM E-1022-84 (Reapproved 1988). Standard Practice for 
conducting Bioconcentration Tests with Fishes and Saltwater 
Bivalve Molluscs.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1137
 
Приложение  1 
Химически  характеристики  на приемлива  разреждаща  вода  
Вещество  Гранична  концентрация  
1 Специфично  вещество  5 mg/l 
2 Общо  органичен  въглерод  2 mg/l 
3 Нейонизиран  амоняк  1 μg/l 
4 Остатъчен  хлор  10 μg/l 
5 Общо  органофосфорни  пестициди  50 ng/l 
6 Общо  органохлорни  пестициди  плюс  полихлорирани  
бифенили  50 ng/l 
7 Общо  органичен  хлор  25 ng/l 
8 Алуминий  1 μg/l 
9 Арсен  1 μg/l 
10 Хром  1 μg/l 
11 Кобалт  1 μg/l 
12 Мед 1 μg/l 
13 Желязо  1 μg/l 
14 Олово  1 μg/l 
15 Никел  1 μg/l 
16 Цинк  1 μg/l 
17 Кадмий  100 ng/l 
18 Живак  100 ng/l 
19 Сребро  100 ng/l  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1138
 
Приложение  2 
Видове  риба , препоръчвани  за тест  
Препоръчвани  видове  Препоръчвана  
гама  за тестова  
температура  
(°C) Препоръчвана  
обща  дължина  
на тестовото  
животно  (cm)  
1 Danio rerio (  1 ) (Teleostei, Cyprinidae) (Hamilton- 
Buchanan) — аквариумна  рибка  Данио  20—25 3,0 ± 0,5 
2 Pimephales promelas (Teleostei, Cyprinidae) (Rafi ­
nesque) — вид лещанка  20—25 5,0 ± 2,0 
3 Cyprinus carpio (Teleostei, Cyprinidae) (Linnaeus) 
— шаран  20—25 5,0 ± 3,0 
4 Oryzias latipes (Teleostei, Poeciliidae) (Temminck 
and Schlegel) — японска  оризова  рибка  20—25 4,0 ± 1,0 
5 Poccilia reticulata (Teleostei, Poeciliidae) (Peters) — 
гупa 20—25 3,0 ± 1,0 
6 Lepomis macrochirus (Teleostei, Centrarchidae) 
(Rafinesque) — вид слънчева  рибка  20—25 5,0 ± 2,0 
7 Oncorhynchus mykiss (Teleostei, Salmonidae) 
(Walbaum) — дъгова  пъстърва  (американска  
пъстърва ) 13—17 8,0 ± 4,0 
8 Gasterosteus aculeatus (Teleostei, Gasterosteidae) 
(Linnaeus) — триглава  бодливка  18—20 3,0 ± 1,0  
( 1 ) Meyer A., Orti G. (1993) Proc. Royal Society of London, Series B., Vol. 252, p. 231.  
В различните  страни  се използват  различни  речни  и морски  видове , например : 
Leiostomus xanthurus 
Cyprinodon variegatus 
Menidia beryllina 
Cymatogaster aggregata Parophrys vertulus 
Leptocottus armatus 
Gasterosteus aculeatus  Триглава  бодливка  
Dicentracus labrax  Лаврак  
Alburnus alburnus  Уклей
 
Събиране  
Пресноводната  риба , дадена  в таблицата , е лесна  за развъждане  и/или се среща  през цялата  
година , като се има предвид , че наличността  на морските  и речните  риби  е частично  
ограничена  до съответните  страни . Тези  риби  могат  да бъдат  развъждани  и култивирани  
било  в рибни  ферми  или лабораторно , при условия  на контрол  върху  болести  и паразити , 
така че тестовите  животни  да са здрави  и с познат  произход . Тези  риби  се срещат  в много  
части  на света . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1139
 
Приложение  3 
Предвиждане  на продължителността  на фазите  на поглъщане  и 
очистване  
1. Предвиждане  на продължителността  на фазата  на поглъщане  
Преди  извършването  на теста  се прави  пресмятане  на k 2 и следов­  
ателно  някакъв  процент  време , необходим  за достигане  на устойчиво  
състояние , може  да се получи  от емпиричната  връзка  между  k 2 и 
коефициент  на разделяне  октанол /вода  (P  ow ) или kg и водоразт­  
воримостта  (s). 
Пресмятане  на k 2 (ден  -1 ) се получава  например  от следната  емпирична  
връзка  (1): 
log 10 k 2 = - 0,414 log  10 (P ow ) + 1,47 (r  2 = 0,95) ( уравнение  1) 
За другите  връзки  вижте  препратка  2. 
Ако коефициентът  на разделяне  (P ow ) не е известен , пресмятане  може  
да се направи  (3) от информацията  за водоразтворимост  (s) на 
веществото , като се използва : 
log 10 (P ow ) = 0,862 log  10 (s) + 0,710 (r  2 = 0,994) ( уравнение  2) 
където  
s = разтворимост  (mol/l): (n = 36).  
Тези  връзки  се прилагат  само  за химикали  със стойности  на log P  ow 
между  2 и 6,5 (4).  
Времето , необходимо  за достигане  на процент  устойчиво  състояние , 
може  да се получи  чрез прилагане  на пресмятането  за k 2 от общото  
кинетично  уравнение , описващо  поглъщане  и очистване  (кинетика  от 
първи  ред): 
dC f 
dt ¼ k 1 · C w Ä k 2 · C f 
Или ако C w е константа : 
C f ¼ k 1 
k 2 · C w ð1 Ä e Äk 2 t Þ (уравнение  3) 
Когато  се достигне  устойчиво  състояние  (t → ∞), уравнение  3 може  да 
се редуцира  (5) (6) до: 
C f ¼ k 1 
k 2 · C w or C f /C w = k  1 /k 2 = BCF  
Тогава  k 1 /k 2 . C w е едно  приближение  към концентрацията  в рибата  
при устойчиво  състояние  (C f , s ). 
Уравнение  3 може  да се напише  така: 
C f ¼ C f;s ð1 Ä e Äk 2 t Þ or C f 
C fs ¼ 1 Ä e Äk 2 t (уравнение  4) 
Като  приложим  уравнение  4, времето  за достигане  на някакъв  процент  
устойчиво  състояние  може  да се предвиди , когато  k 2 е преизчислено  с 
помощта  на уравнение  1 или 2. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1140
 
Като  насока , статистически  оптималната  продължителност  на фазата  
на поглъщане  за производство  на статистически  приемливи  данни  
(BCF  k ) е онзи  период , който  се изисква  за логаритмичната  крива  на 
концентрация  на тестовото  вещество  в рибата  спрямо  линейното  време  
за достигане  на средната  му точка , или 1,6/k  2 , или 80 % от усто­  
йчивото  състояние , но не повече  от 3,0/k  2 или 95 % устойчивото  
състояние  (7). 
Времето  за достигане  на 80 % от устойчивото  състояние  е 
(уравнение  4): 
0; 80 ¼ 1 Ä e Äk 2 t 80 or t 80 ¼ 1; 6 
k 2 (уравнение  5) 
По подобен  начин  95 % от устойчивото  състояние  е: 
t 95 ¼ 3; 0 
k 2 (уравнение  6) 
Например  продължителността  на фазата  на поглъщане  (up) за тестово  
вещество  с log P  ow = 4 ще бъде  (използвайки  уравнения  1, 5 и 6): 
log 10 k 2 = - 0,414.(4) + 1,47 k  2 = 0,652 дни  -1 
up (80 %) = 1,6/0,652, т.е. 2,45 дни (59 часа) 
или up (95 %) = 3,0/0,652, т.е. 4,60 дни (110 часа) 
По подобен  начин  за тестово  вещество  с s = 10  -5 mol/1 (log(s) = 5,0), 
продължителността  на up ще бъде  (използвайки  уравнения  1, 2, 5 и 6): 
log 10 (P ow ) = 0,862 (– 5,0) + 0,710 = 5,02  
log 10 k 2 = 0,414 (5,02)+1,47  
k 2 = 0,246 дни  -1 
up (80 %) = 1,6/0,246, т.е. 6,5 дни (156 часа) 
или up (95 %) = 3,0/0,246, т.е. 12,2 дни (293 часа) 
Алтернативно  изразът : 
t eq = 6,54 × 10  3 P ow + 55,31 ( часа) 
може  да се използва  за изчисляване  на времето  за достигане  на 
ефективно  устойчиво  състояние  (4). 
2. Предвиждане  на продължителността  на фазата  на очистване  
Предвиждане  на времето , необходимо  за намаляване  на товара  на 
теглото  до някакъв  процент  на начална  концентрация , може  също  да 
се получи  от общото  уравнение , описващо  поглъщането  и очистването  
(кинетика  от първи  ред) (1) (8).  
За фазата  на очистването  C w се приема  за нула . Уравнението  може  да 
се редуцира  до: 
dC f 
dt ¼ Ä k 2 C f or C f ¼ C f;o · e Äk 2 t ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1141
 
където  C f, o е концентрацията  при старта  на периода  на очистването . 
Тогава  50 % очистване  ще се достигне  за времето  (t 50 ): 
C f 
C f;o ¼ 1 
2 ¼ e Äk 2 t 50 or t 50 ¼ 0; 693 
k 2 
По подобен  начин  95 % очистване  ще се достигне  при: 
t 95 ¼ 3; 0 
k 2 
Ако 80 % поглъщане  се използва  за първия  период  (1,6/k  2 ) и 95 % 
загуба  при фазата  на очистването  (3,0/k  2 ), тогава  фазата  на 
очистването  е приблизително  два пъти  продължителността  на фазата  
на поглъщането . 
Важно  е да се отбележи  обаче , че пресмятанията  са базирани  на 
допускането , че кривите  на поглъщане  и очистване  ще следват  
кинетика  от първи  ред. Ако такава  кинетика  не се получи , трябва  да 
се използват  по-сложни  модели  (например  препратка  1). 
ПРЕПРАТКИ  (в приложение  3) 
(1) Spacie A. and Hamelink J. L. (1982). Alternative models for desc ­
ribing the bioconcentration of organics in fish. Environ. Toxicol. and Chem. 1, pp. 309—320.
 
(2) Kristensen P. (1991). Bioconcentration in fish: comparison of BCFs 
derived from OECD and ASTM testing methods; influence of parti ­
culate matter to the bioavailability of chemicals. Danish Water Quality Institute.
 
(3) Chiou C. T. and Schmedding D. W. (1982). Partitioning of organic 
compounds in octanol-water systems. Environ. Sci. Technol. 16 (1), 
pp. 4—10.  
(4) Hawker D. W. and Connell D. W. (1988). Influence of partition coef ­
ficient of lipophilic compounds on bioconcentration kinetics with fish. 
Wat. Res. 22 (6), pp. 701—707.  
(5) Branson D. R., Blau G. E., Alexander H. C. and Neely W. B. (1975). 
Transactions of the American Fisheries Society, 104 (4), pp. 785—792.  
(6) Ernst W. (1985). Accumulation in Aquatic organisms. In: Appraisal of 
tests to predict the environmental behaviour of chemicals. Ed. by Sheehman P., Korte F., Klein W. and Bourdeau P. H. Part 4.4, pp. 
243—255. SCOPE, 1985, John Wiley & Sons Ltd N.Y.
 
(7) Reilly P. M., Bajramovic R., Blau G. E., Branson D. R. and 
Sauerhoff M. W. (1977). Guidelines for the optimal design of experiments to estimate parameters in first order kenetic models, 
Can. J. Chem. Eng. 55, pp. 614—622.
 
(8) Könemann H. and Van Leeuwen K. (1980). Toxicokinetics in fish: 
Accumulation and Elimination of six Chlorobenzenes by Guppies. Chemosphere, 9, pp. 3—19.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1142
 
Приложение  4 
Теоретичен  пример  за програма  за вземане  на проби  за биоконцентрационни  тестове  на вещества  с log 
P ow = 4 
Вземане  на проба  от 
риба  Програма  за вземане  на проби  
Брой  на пробите  вода  Брой  на рибите  за проба  минимална  изисквана  
честота  (дни) допълнително  вземане  
на проби  
Фаза  на поглъщане  -1 
0 2 (*) 
2 Прибавете  45 до 80 
риби  
1-ва 0,3 0,4 2 
(2) 4 
(4) 
2-ра 0,6 0,9 2 
(2) 4 
(4) 
3-та 1,2 1,7 2 
(2) 4 
(4) 
4-та 2,4 3,3 2 
(2) 4 
(4) 
5-та 4,7 2 6 
Фаза  на очистване  Прехвърлете  рибата  
към вода  без тестови  
химикали  
6-та 5,0 5,3 4 
(4) 
7-ма 5,9 7,0 4 
(4) 
8-ма 9,3 11,2 4 
(4) 
9-та 14,0 17,5 6 
(4) 
(*) Пробата  вода  след  минимум  три прехвърляния  на обема  на камерата . 
Стойностите  в скобите  са броят  на пробите  (вода , риба ), които  трябва  да се вземат , ако се прави  допълнително  вземане  
на проби . 
Забележка : Предварително  пресмятане  на k 2 за log P  ow от 4,0 е 0,652 дни  -1 . Общата  продължителност  на експеримента  е 
за 3 × up = 3 × 4,6 дни, т.е. 14 дни. За пресмятането  на „up“ се обърнете  към приложение  3. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1143
 
Приложение  5 
Оценка  на модела  
Повечето  данни  за биоконцентрация  се считат  за сравнително  добре  
описани  чрез прост  модел  на две прегради /два параметъра , както  е 
показано  чрез правата  линия  на графиката , която  се доближава  до 
точките  на концентрация  в рибата , по време  на фазата  на очистване , 
когато  са изчертани  върху  полулогаритмична  хартия . (Когато  тези точки  
не могат  да се опишат  с такава  права  линия , тогава  трябва  да се 
използват  по-сложни  модели , например  този на Spacie and Hamelink, 
препратка  1 в приложение  3). 
Графичен  метод  за определяне  на константата  на очистване  (загуба ) k 2 
Изчертайте  концентрацията  на тестовото  вещество , отчетена  във всяка  
проба  от риба  спрямо  времето  за вземане  на проба , върху  полул­  
огаритмична  хартия . Наклонът  на тази линия  е k 2 . 
k 2 ¼ ln ðC f1=C f2 Þ 
t 2 Ä t 1
 
Забележете , че отклоненията  от правата  линия  може  да означават  по-сложна  
графика  на очистването  от такава  в кинетика  първи  ред. Може  да се 
приложи  графичен  метод  за анализиране  на видове  очистване , което  се 
отклонява  от кинетика  първи  ред. 
Графичен  метод  за определяне  на константата  на поглъщане  k 1 
При дадена  k 2 изчислете  k 1 както  следва : 
k 1 ¼ C f k 2 
C w Ü ð1 Ä e Äk 2 t Þ (уравнение  1) 
Стойността  на C f се отчита  от средната  точка  на гладката  крива  на 
поглъщането , получена  от данните , когато  log концентрация  се изчертава  
спрямо  времето  (върху  аритметична  скала ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1144
 
Компютърен  модел  за изчисление  на константите  на скоростта  на 
поглъщане  и очистване  
Предпочитан  начин  за получаване  на коефициента  на биоконцентрация  и на 
константите  за скорост  k 1 и k 2 е използването  на нелинейни  параметрични  
изчислителни  методи  на компютър . Такъв  софтуер  намира  стойностите  на 
k 1 и k 2 при наличие  на данни  за време  и концентрация  и модела : 
C f ¼ C w · k 1 
k 2 Ü 1 Ä e Äk 2 t Ê Ì  
0 < t < t  c (уравнение  2) 
C f ¼ C w · k 1 
k 2 Ü e Äk 2 ðtÄt c Þ Ä e Äk 2 t Ê Ì  
t < t  c (уравнение  3) 
където  t c = време  в края  на фазата  на поглъщане . 
Този  подход  осигурява  изчисление  на k 1 и k 2 със стандартно  отклонение . 
Понеже  k 2 в повечето  случаи  може  да се пресметне  от кривата  на 
очистването  с относително  висока  точност  и тъй като съществува  силна  
корелация  между  двата  параметъра  k 1 и kg, ако се пресмятат  едновременно , 
препоръчително  е първо  да се изчисли  k 2 само  от кривата  на очистването , а 
след  това да се изчисли  k 1 от данните  за поглъщане , като се използва  
нелинейна  регресия . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1145
 
В.14. ТЕСТВАНЕ  РАСТЕЖА  НА МЛАДИТЕ  РИБИ  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изследване  на токсичността  при растежа  е точно  
копие  на ОECD TG 215 (2000).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Това  тестване  се планира  с цел да се направи  оценка  на възде­  
йствията  при продължително  излагане  на химикали  при растежа  
на младите  риби . Базира  се на метода , развит  и кръгово  тестван  
(1) (2) в Европейския  съюз , за оценка  на въздействията  от 
химикали  върху  растежа  на младата  дъгова  пъстърва  (Oncor­
hynchus mykiss)  в потокови  условия . Могат  да се използват  и 
други  добре  документирани  видове . Например  е постигнат  
опит  от тестове  върху  растежа  с риба  зебра  (Danio rerio)  ( 1 ) 
(3) (4) и оризова  риба  (медака , Oryzias latipes)  (5) (6) (7).  
Вижте  също  Основно  въведение , част В. 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Най-ниска  концентрация  на наблюдавано  въздействие  
(LOEC):  е най-ниската  тествана  концентрация  от тестваното  
вещество , при която  се наблюдава  значително  въздействие  на 
веществото  (при р < 0,05), при сравнение  с контрола . Обаче  
всички  тествани  концентрации  над LOEC трябва  да имат  
вредно  въздействие , равно  или по-голямо  от това, наблюдавано  
при LOEC.  
Концентрация  на ненаблюдавано  въздействие  (NOEC): това е 
тестваната  концентрация  непосредствено  под концентрацията  
LOEC.  
ЕС Х : в този метод  на извършване  на теста  представлява  конце­  
нтрацията  тествано  вещество , която  причинява  х % проме­  
нливост  при величината  на растеж  на рибите  в сравнение  с 
контролите . 
Скорост  на концентрация : е мокрото  тегло  на рибата  на 
количество  вода . 
Плътност  на биомасата : е броят  на рибата  на количество  вода . 
Индивидуална  скорост  на специфичния  растеж  на рибата : 
изразява  скоростта  на растежа  на един  индивид , основана  на 
първоначалното  тегло . 
Основна  за резервоара  специфична  скорост  на растеж : 
изразява  основната  скорост  на растеж  за резервоара  при една  
концентрация . 
Псевдоспецифична  скорост  на растеж : изразява  
индивидуалната  скорост  на растежа  в сравнение  с основното  
първоначално  тегло  на резервоара . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1146  
( 1 ) Meyer, A., Bierman, C. H. and Orti, G. (1993). The phytogenetic position of the 
zebrafish ( Danio Rerio ), a model system in developmental biology: an invitation to 
the comparative method. Proc. R. Soc. Lond. B. 252, 231—236.
 1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТВАНЕ  
След  измерване  на теглото , младата  риба  при фаза  на експоне­  
нциален  растеж  се поставя  в помещенията  за тестване  и се 
излага  на серия  сублетални  концентрации  от тестваното  
вещество , разтворено  за предпочитане  във вода  при течение , 
или ако не е възможно  при подходящи  полустатични  
(статично -сменяеми ) условия . Продължителността  на теста  е 28 
дни. Рибите  се хранят  всекидневно . Съотношението  на храната  
се основава  на първоначалното  тегло  на рибата  и може  да се 
преизчисли  след  14 дни. На края  на теста  теглото  на рибата  се 
измерва  отново . Въздействието  върху  скоростта  на растежа  се 
анализира  като се използват  регресивни  модели  с цел да се 
изчисли  концентрацията , която  би довела  до х % променливост  
в скоростта  на растежа , т.е. ЕС Х (например  ЕС 10 , ЕС 20 или ЕС 
30 ). Като  алтернатива  данните  могат  да се сравняват  с 
контролните  стойности  с цел да се определи  най-ниската  конце­  
нтрация  на наблюдавано  въздействие  (LOEC) и следователно  
концентрацията  на ненаблюдаваното  въздействие  (NOEC).  
1.4. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ТЕСТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Резултатите  от теста  за остра  токсичност  (виж метода  на тест 
В.1), за предпочитане  извършен  с избрани  за този тест видове , 
следва  да са на разположение . Това  предполага , че водната  разт­  
воримост  и парното  налягане  на тестваното  вещество  са 
известни  и е налице  надежден  аналитичен  метод  за колич­  
ествено  определяне  на веществото  в тествания  разтвор  с 
позната  и отчетена  точност  и е налице  ограничаване  на 
откриването . 
Полезната  информация  включва  формула  на структурата , 
чистота  на веществото , устойчивост  на вода  и светлина , рК а , 
P ow и резултати  от изследване  на готово  биохимично  разлагане  
(вж. метод  на теста  В.4). 
1.5. ВАЛИДНОСТ  НА ТЕСТА  
За да е валиден  тестът , се прилагат  следните  условия : 
— в края  на теста  контролираната  смъртност  не трябва  да 
превишава  10 %,  
— основното  контролирано  тегло  на рибата  трябва  да се 
повишава , така че да позволява  установяване  на миним­  
алната  променливост  на скоростта  на растеж , отбелязана  
като значителна . Кръгов  тест (3) е показал , че за дъговата  
пъстърва  основното  тегло  на контролираната  риба  се е 
повишило  с поне  половината  (т.е. 50 %) от тяхното  средно  
първоначално  тегло  за 28 дни; например  първоначално  тегло : 
1g/риба  (= 100 %), крайно  тегло  след  28 дни: = 1,5 g/p ибa 
(= 150 %),  
— концентрацията  на разтворен  кислород  трябва  да бъде  поне  
60 % от стойността  на насищане  на въздуха  с влага  по време  
на теста , 
— температурата  на водата  трябва  да не по-висока  от ± 1  o С 
между  помещенията , в които  се провежда  теста , по всяко  
едно  време  по време  на провеждането  на теста , и се 
поддържа  стойност  от 2 o С със специфичните  за тестваните  
видове  стойности  на температурата  (приложение  1). 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТВАНЕ  
1.6.1.  Апаратура  
Обикновено  лабораторно  оборудване , и по-специално  следното : 
— О 2 и рН-метър ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1147
 
— оборудване  за определяне  твърдост  и алкалност  на водата ; 
— подходяща  апаратура  за контрол  на температурата  и за 
предпочитане  продължителен  мониторинг ; 
— аквариуми , направени  от химични  инертни  материали  и с 
подходящ  капацитет  по отношение  на препоръчителната  
плътност  на зареждане  и биомаса  (вж. точка  1.8.5 и 
приложение  I); 
— подходящ  прецизен  баланс  (т.е. прецизност  от ± 0,5 %).  
1.6.2.  Вода  
Всяка  вода , в която  тестваният  вид показва  съответните  
признаци  за дългосрочен  живот  и растеж , може  да се използва  
като вода  за тестване . Тя следва  да е с постоянно  качество  през 
целия  период  на провеждане  на теста . Стойността  на рН на 
водата  е от 6,5 до 8,5, но по време  на тестване  е ± 0,5 рН 
единици . Препоръчва  се твърдост  над 140 mg/l ( като СаСО  3 ). 
С цел да се гарантира , че разредената  вода  не влияе  прекалено  
на резултатите  от теста  (например  чрез образуване  на 
координационно  съединение  на тестваното  вещество ), следва  
да се взимат  проби  за анализ  на равни  интервали  от време . 
Правят  се измервания  на твърди  метали  (например  Cu, Pb, Zn, 
Hg, Cd и Ni), основните  аниони  и катиони  (например  Са, Mg, 
Na, K, Cl и SO  4 ), пестициди  (например  органофосфорни  и орга­  
нохлоридни  пестициди ), органичен  въглерод  и твърди  частици , 
например  на всеки  три месеца , когато  се знае, че водата  за 
разреждане  има съответното  постоянно  качество . Ако се 
вижда , че качеството  на водата  е постоянно  за поне  повече  от 
една  година , то изследванията  могат  да са по-редки  и да се 
увеличат  интервалите  (например  на всеки  шест  месеца ). Някои  
от химичните  характеристики  на разредената  водата  за 
разреждане  са изброени  в допълнение  2. 
1.6.3.  Разтвори  за извършване  на изследването  
Разтвори  за теста  при избрана  концентрация  се приготвят  чрез 
разреждане  на основния  разтвор . 
Основният  разтвор  се приготвя  за предпочитане  чрез просто  
смесване  и разбъркване  на тестваното  вещество  в разредена  
вода , като се използват  механични  средства  (например  
разклащане  или с помощта  на ултразвук ). За постигане  на 
подходящо  концентриран  основен  разтвор  могат  да се 
използват  колони  на насищане  (колони  на разтваряне ). 
Използването  на разтворители  и диспергиращи  устройства  
(разтварящи  фактори ) може  да се наложи  в някои  случаи  с 
цел да се получи  подходящ  концентриран  основен  разтвор . 
Подходящи  разтворители  са например  ацетонът , етанолът , мета­  
нолът , диметилсулфооксидът , диметилформамидът  и триетиле­  
нгликолът . Примери  за подходящи  диспергиращи  устройства  
са Cremophor RH 40, Tween 80, Метилцелулоза  0,01 % и 
НСО -40. При употребата  на готови  биоразграждащи  вещества  
(например  ацетон ) и/или високолетливи  съединения  се взема  
предвид , че те могат  да причинят  проблеми  с бактериалното  
натрупване  при потоковите  тестове . Когато  се използва  разт­  
ворима  добавка , тя не трябва  да оказва  нито  значително  възде­  
йствие  върху  растежа  на рибите , нито  невидими  вредни  ефекти  
върху  младия  екземпляр , проявени  при контрол  само  чрез 
разтвора . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1148
 
За потоковите  тестове  се изисква  система , която  постоянно  
дозира  и разрежда  основния  разтвор  на тестваното  вещество  
(например  измерваща  помпа , пропорционален  разредител , напо­  
ителни  системи ) за да се прехвърлят  серии  от концентрации  към 
помещенията  за тестване . Параметрите  на изтичането  на 
основния  разтвор  и водата  за разреждане  се проверяват  на 
интервали , за предпочитане  всеки  ден, по време  на 
извършването  на теста  и през това време  не следва  да се 
променят  с повече  от 10 %. Кръговите  тестове  (3) показват , че 
при дъговата  пъстърва  честотата  на отстраняване  на водата  по 
време  теста  от 6 l/g на риба /ден е приемлива . 
За полустатичните  (подновяемите ) тестове  честотата  на средното  
подновяване  ще зависи  от устойчивостта  на тестваното  
вещество , но се препоръчва  всекидневна  смяна  на водата . Ако 
от първоначалните  тестове  за устойчивост  (вж. точка  1.4), се 
вижда , че концентрацията  на тестваното  вещество  не е 
стабилна  (т.е. извън  номиналните  стойности  от 80—120 % или 
падне  под 80 % от измерената  първоначална  концентрация ) по 
време  на периода  на смяна , се взема  предвид  употребата  на 
потокови  тестове . 
1.6.4.  Избор  на видове  
Дъговата  пъстърва  (Oncorhynchus mykiss)  е видът , които  се 
препоръчва  за тези тестове , тъй като най-много  опити  са били  
сполучливи  с този вид (1) (2). Обаче  други  добре  документирани  
видове  могат  да се използват , но процедурата , по която  се 
извършва  тестът , може  да се адаптира , за да се постигнат  
подходящи  условия  за провеждане  на теста . Например  има 
наличен  опит  с риба  зебра  (Danio rerio)  (3) (4) и оризова  риба  
(медака , Oryzias latipes)  (5) (6) (7). В тези случаи  се посочват  
причините  за рационалното  избиране  на видовете  и методът , по 
които  ще се проведе  експериментът . 
1.6.5.  Отглеждане  на рибата  
Рибата , която  се използва  за извършването  на теста , се избира  от 
популация  на едно  стадо , за предпочитане  от едно  и също  
изхвърляне  на хайвера , който  е бил отглеждан  в продължение  
на поне  две седмици  преди  теста , при условия , подобни  на тези, 
използвани  при теста , като качеството  на водата  и осветление . 
Те се хранят  с минимум  количество  от 2 % от телесното  тегло  
на ден и за предпочитане  4 % от телесното  тегло  на ден през 
време  на периода  на отглеждане  и по време  на теста . 
В следващият  48-часов  период  се записват  всички  случаи  на 
смъртност  и се прилагат  следните  критерии : 
— при смъртност , по-висока  от 10 % от популацията  за седем  
дни, се изхвърля  цялата  партида , 
— при смъртност  между  5 % и 10 % от популацията  се изчаква  
аклиматизация  за нови  седем  дни; ако смъртността  е повече  
от 5 % през вторите  седем  дни, се изхвърля  цялата  партида , 
— при смъртност , по-малко  от 5 % от популацията  за седем  
дни, партидата  се приема . 
При заболяване  на рибите  през последните  две седмици , 
предхождащи  теста , или по време  на теста  те не се третират  с 
лекарства . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1149
 
1.7. ПЛАНИРАНЕ  НА ИЗВЪРШВАНЕТО  НА ТЕСТА  
Планирането  на теста  се изразява  в избор  на броя  и разст­  
оянието  на тестваната  концентрация , броя  на аквариумите  за 
всяко  ниво  концентрация  и броя  на рибите  в аквариум . В 
идеални  условия  планирането  на теста  се извършва  по 
отношение  на: 
— целите  на проучването ; 
— метода  на статистическия  анализ , които  ще се използва ; 
— наличност  и цена  на източниците  на експеримента . 
При излагането  на целите , ако е възможно , се определят  
статистическите  показатели , при които  се изисква  да се 
определи  определен  вид разлика  (например  при размера  на 
растежа ) или алтернативно  се изисква  точността , с която  да се 
оцени  ЕС Х (например  с х = 10, 20 или 30, и за предпочитане  не 
по-малко  от 10). Без да бъде  извършено  това, не може  да се даде  
установено  предписание  за обхвата  на изследването . 
Важно  е да се отбележи , че планирането , което  е оптимално  (с 
най-добра  употреба  на ресурсите ) чрез използване  на един  метод  
на статистически  анализ , не е непременно  оптимално  чрез 
използване  на друг . Препоръчаното  планиране  за оценка  на 
LOEC/NOEC следователно  няма  да бъде  същото  като това, 
което  е препоръчано  за регресионен  анализ . 
В повечето  случаи  регресионният  анализ  се предпочита  пред  
дисперсионния  анализ  поради  причини , дискутирани  от 
Стефан  и Роджърс  (9). Обаче , когато  не се намери  подходящ  
регресен  модел  (г 2 < 0,9), следва  да се използва  LOEC/NOEC.  
1.7.1.  Проектиране  на регресионния  анализ  
При проектирането  на теста , който  трябва  да се анализира  чрез 
регресия , е важно  да се има предвид : 
— концентрацията  на въздействие  (например  ЕС 10, 20, 30  ) и стой­  
ността  на концентрация , над която  въздействието  на 
тестваното  вещество  е от значение , е необходимо  да се 
измерват  чрез концентрацията , включена  в теста . Точността , 
с която  може  да се направи  оценка  на концентрацията  на 
въздействието , ще бъде  най-голяма , когато  концентрацията  
на въздействието  е в средата  на стойността  на тестваната  
концентрация . Предварителни  тестове  за определяне  на 
обхвата  могат  да бъдат  полезни  за правилното  избиране  на 
тестваната  концентрация ; 
— за да е възможно  задоволително  статистическо  моделиране , 
тестът  следва  да включва  поне  един  контролен  аквариум  и 
пет допълнителни  с различни  концентрации . Когато  е 
приложимо  и когато  се използва  разтворимо  вещество , се 
извършва  контрол  с разтворимото  вещество  на най- 
високата  тествана  концентрация  като допълнение  на 
тестовите  серии  (вж. точки  1.8.3 и 1.8.4);  
— използват  се подходящи  геометрични  и логаритмични  серии  
(9) (вж. приложение  3). Трябва  да се предпочете  логаритм­  
ичното  разпределяне  на тестваната  концентрация ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1150
 
— ако повече  от шест  аквариума  са на разположение , допълнит­  
елните  аквариуми  следва  или да се използват  за дубликати , 
или да се разпределят  сред  обхвата  на концентрацията , за да 
се позволи  по-близко  разполагане  на нивата . Всяка  една  от 
тези мерки  е желателна  в еднаква  степен . 
1.7.2.  Проектиране  оценката  на LOEC/NOEC чрез  използване  на 
дисперсионния  анализ  (ANOVA)  
За всяка  концентрация  се препоръчва  дублиране  на аквариума  и 
статистическият  анализ  следва  да се извършва  на ниво  аквариум  
(10). Без дублиращи  аквариуми  не може  да се позволи  разлика  
между  аквариумите , извън  тази, която  се дължи  на отделните  
риби . Обаче  опитът  показва , че в този случай  (11) променли­  
востта  между  аквариумите  може  в много  малка  степен  да се 
сравнява  с тази в аквариума  (т.е. между  рибите ). Следователно  
сравнително  приемлива  алтернатива  е да се извърши  статист­  
ически  анализ  на ниво  отделна  риба . 
Условно  се използват  поне  пет концентрации  в геометрична  
прогресия  за предпочитане  с коефициент , който  не 
надвишава  3,2.  
Обикновено , когато  се извършват  тестове  с дублиращи  
аквариуми , броят  на дублиращия  контрол  и следователно  
броят  на рибите  следва  да е два пъти  повече  от броя  в 
тестваните  концентрации , които  следва  да са с еднакъв  размер  
(12), (13), (14). Обратно , при липсата  на дублиращ  аквариум  
броят  на рибите  в контролната  група  е същият  като броя  във 
всяка  тествана  концентрация . 
Ако ANOVA се основава  по скоро  на аквариума , отколкото  на 
отделната  риба  (която  би имала  за последица  индивидуално  
маркиране  на рибата  или употребата  на „псевдо “ специфична  
скорост  на растежа  (вж. точка  2.1.2), има нужда  от достатъчно  
дублиране  на аквариумите , за да се даде  възможност  да се 
определи  стандартното  отклонение  в „концентрацията  на 
аквариума “. Това  означава , че степента  за свободна  грешка  
при анализа  на променливостта  е поне  5 (10). Ако само  
контролните  аквариуми  се дублират , има опасност  сгрешената  
променливост  да бъде  повлияна , защото  може  да се увеличи  със 
средната  стойност  за съответната  скорост  на растеж . Тъй като е 
много  вероятно  скоростта  на растежа  да се намали  с увелича­  
ването  на концентрацията , това ще доведе  до надценяване  на 
променливостта . 
1.8. ПРОЦЕДУРА  
1.8.1.  Избор  и измерване  теглото  на тестваните  риби  
Важно  е променливостта  в теглото  на рибата  в началото  на теста  
да се сведе  до минимум . Подходящият  размер  за различните  
видове , който  се препоръчва  при използване  в теста , е даден  в 
приложение  1. За цялата  партида  от риби , използвани  в теста , 
стойностите  на индивидуалните  тегла  в началото  на теста  
теоретически  се запазват  в ± 10 % от средното  аритметическо  
тегло  и при всички  случаи  не надвишава  25 %. Препоръчва  се 
да се измерва  и теглото  на подобразец  риба  преди  теста  с цел да 
се изчисли  средното  тегло . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1151
 
24 часа преди  началото  на теста  не се дава храна  на основната  
популация . Рибите  след  това се избират  произволно . Като  се 
използва  основно  упойващо  средство  (например  воден  разтвор  
от 100 mg/l трикаин  метан  сулфонат  (MS 222), неутрализиран  
допълнително  от две части  сода  бикарбонат  за една  част MS 
222), рибата  следва  да се измерва  индивидуално  като мокрото  
тегло  (изсушаване  до сухо ) с точността , посочена  в 
приложение  1. Тези  риби  с тегло  в рамките  на очакваното  се 
съхраняват  и след  това се разпределят  произволно  между  
съдовете  за теста . Общото  мокро  тегло  на рибата  във всеки  
съд се записва . Използването  на упойващо  средство , също  
както  и отглеждането  на рибите  (включително  изсушаването  и 
измерването ) може  да причини  стрес  и наранявания  на младата  
риба , и по-специално  за видовете  с малки  размери . Следов­  
ателно  отглеждането  на млади  риби  трябва  да се извършва  с 
най-голяма  грижа , за да се избегне  подлагането  на стрес  и 
нараняването  на тестваните  животни . 
Теглото  на рибите  се измерва  отново  на двадесет  и осмия  ден от 
теста  (вж. точка  1.8.6). Обаче , ако се намери  за необходимо  да 
се преизчисли  порцията  храна , теглото  на рибата  може  да се 
измери  отново  на четиринадесетия  ден от теста  (вж. точка  
1.8.2.3). Друг  метод , като фотографския , може  да се използва  
за определяне  измененията  при размера  на рибата  на основата , 
на която  се определя  порцията  храна . 
1.8.2.  Условия  на излагане  
1.8.2.1.  Продължителност  
Продължителността  на теста  е ≥ 28 дни. 
1.8.2.2.  Скорост  на зареждане  и плътност  на биомасата  
Важно  е скоростта  на концентрация  и плътността  на биомасата  
да са подходящи  за използваните  за теста  видове  (вж. 
приложение  I). Ако плътността  на биомасата  е прекалено  
висока , в резултат  от препълването  ще се появи  стрес , което  
ще доведе  до намаляване  скоростта  на растежа , а е възможно  
да доведе  и до заболяване . Ако е прекалено  ниска  може  да се 
предизвика  намаляване  на териториалното  поведение , което  
също  ще рефлектира  върху  растежа . Във всички  случаи , 
скоростта  на концентрация  следва  да е достатъчно  ниска , за да 
може  да се поддържа  концентрация  на разтворен  кислород  от 
поне  60 % ASV без вентилиране . Кръговите  тестове  (2) 
показват , че за дъговата  пъстърва , се приема  скорост  на конце­  
нтрация  от 16 пъстърви  от 3—5 g в 40-литров  обем . Препоръч­  
ителната  честота  на смяна  на водата  по време  на теста  е 6 l/g за 
риба /ден. 
1.8.2.3.  Хранене  
Рибите  следва  да бъдат  хранени  с подходяща  храна  
(приложение  1) в достатъчно  количество  за да се предизвика  
приемлива  скорост  на растежа . Следва  да се полагат  грижи  за 
избягване  появата  на микроби  и мътност  на водата . За дъговата  
пъстърва  стойност  от 4 % от теглото  ѝ на ден вероятно  отговаря  
на тези условия  (3), (15), (16), (17). Дневната  порция  може  да 
бъде  разделена  на две равни  части  и да се дава на рибите  на два 
пъти  на ден, в период  от поне  пет часа. Порцията  се основава  на 
първоначалното  общо  тегло  на рибата  за всеки  съд. Ако теглото  
на рибата  се измери  на четиринадесетия  ден, порцията  се 
преизчислява . Даването  на храна  се прекратява  24 часа преди  
измерването  на теглото  на рибата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1152
 
Неизядената  храна  и фекалните  отпадъци  следва  да се изхвърлят  
от съда  за тестване  всеки  ден чрез внимателно  почистване  на 
дъното  на всеки  аквариум , с използване  на вакуум . 
1.8.2.4.  Светлина  и температура  
Продължителността  на излагане  на светлина  и водната  
температура  следва  да са подходящи  за тестваните  видове  
(приложение  I). 
1.8.3.  Тествана  концентрация  
Обикновено  се изискват  пет концентрации  на тестваното  
вещество , без оглед  на планирането  на теста  (вж. точка  1.7.2). 
Предишните  познания  за токсичността  на тестваното  вещество  
(например  от акутен  тест и/или сведения  от проучвания  за 
обхвата ) помагат  при избора  на подходящ  тест за конце­  
нтрацията . Обосновава  се използването  на по-малко  от пет 
концентрации . Най-високата  тествана  концентрация  не следва  
да надвишава  границата  на разтворимост  на веществото  във 
вода . 
Когато  разтворимият  фактор  се използва , за да участва  при 
подготовката  на основния  разтвор , неговата  последна  конце­  
нтрация  не следва  да е по-висока  от 0,1 ml/l и е за предпочитане  
да бъде  еднаква  при всички  съдове  за тестване  (вж. точка  1.6.3). 
Независимо  от това, всички  усилия  следва  да са насочени  към 
избягване  употребата  на подобни  материали . 
1.8.4.  Контроли  
Броят  на контролите  за разреждане  във вода  зависи  от 
планирането  на теста  (вж. точки  1.7-1.7.2). Ако се използва  
разтворим  фактор , тогава  се включват  същия  брой  контроли , 
както  при контроли  за разреждане  във вода . 
1.8.5.  Честота  на аналитичните  установявания  и измервания  
По време  на теста  концентрациите  на тестваното  вещество  се 
определят  на равни  интервали  от време  (вж. по-долу ). 
При потокови  тестове , величината  на течението  на разтворителя  
и основния  токсичен  разтвор  се проверяват  на интервали , за 
предпочитане  всеки  ден, и следва  да не варират  с повече  от 
10 % по време  на теста . Когато  се очаква  концентрациите  
тествано  вещество  да бъдат  в ± 20 % от номиналната  стойност  
(т.е. в стойности  80—120 %; вж.точки  1.6.2 и 1.6.3), се 
препоръчва  като минимум  да се анализират  най-високата  и 
най-ниската  концентрация  на теста  при започването  на теста  и 
след  това на интервали  всяка  седмица . За тестове , където  конце­  
нтрацията  на тестваното  вещество  не се очаква  да остане  в 
номиналната  стойност  от ± 20 % ( на основата  на данни  за 
стабилността  на тестваното  вещество ), е необходимо  да се 
анализират  всички  тествани  концентрации , но като се следва  
същия  режим . 
При полустатичните  (обновяеми ) тестове , където  конце­  
нтрацията  на тестваното  вещество  се очаква  да остане  в номин­  
алната  стойност  от ± 20 %, се препоръчва  като минимум  да се 
анализират  най-високата  и най-ниската  концентрация  на теста , 
скоро  след  подготовката  им и веднага  преди  възстановяването  
им в началото  на проучването  и след  това всяка  седмица . За 
тестове , където  концентрацията  на тестваното  вещество  не се 
очаква  да остане  в номиналната  стойност  от ± 20 %, трябва  да 
се анализират  всички  тествани  концентрации , следвайки  същия  
режим  като при повечето  стабилни  вещества . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1153
 
Препоръчва  се резултатите  да се базират  на измерените  конце­  
нтрации . Обаче  ако съществува  доказателство , което  показва , че 
концентрацията  на тестваното  вещество  при разтваряне  е 
поддържана  на задоволително  ниво  в номиналната  стойност  от 
± 20 % или по време  на теста  е измервана  първоначалната  
концентрация , тогава  резултатите  могат  да се основават  на 
номиналната  и на измерената  стойности . 
Възможно  е да се наложи  филтриране  (т.е. използване  на отвори  
с размер  0,45 (μm) или центрофугиране . Центрофугирането  се 
препоръчва  като процедура . Обаче  в случай  че тестваният  
материал  не се адсорбира  чрез филтрите , филтрирането  също  е 
приемливо . 
По време  на теста , разтворения  кислород , рН и температурата  от 
всеки  съд за тестване  следва  да бъдат  измервани . Общата  
твърдост , алкалност  и соленост  (ако се взема  предвид ) се 
измерват  при контролните  органи  и съда  с най-висока  конце­  
нтрация . Разтвореният  кислород  и солеността  (ако се взема  
предвид ) се измерват  най-малко  три пъти  (в началото , средата  
и края  на теста ). При полустатичните  тестове  се препоръчва  
разтвореният  кислород  да се измерва  по-често , за предпочитане  
преди  и след  всяка  смяна  на водата  или поне  веднъж  на 
седмица . РН се измерва  в началото  и след  всяка  смяна  на 
водата  при статичните  възстановими  тестове  и поне  веднъж  в 
седмицата  при потоковите  тестове . Твърдостта  и алкалността  се 
измерват  поне  веднъж  по време  на теста . За предпочитане  е 
температурата  да се наблюдава  продължително  по време  на 
теста  поне  при един  от съдовете . 
1.8.6.  Наблюдения  
Тегло : в края  на изследването  трябва  да се измери  теглото  на 
всички  останали  живи  риби  като мокро  тегло  (чрез пълно  
изсушаване ) или в група  от тествания  съд, или поотделно  
Измерването  на теглото  на животните  от съда , използван  при 
теста , се предпочита  пред  измерването  на индивидуалното  
тегло , което  изисква  рибите  да бъдат  маркирани  поотделно . 
При индивидуалното  измерване  за определяне  на 
индивидуалната  скорост  на растеж  на рибите , техниката  за 
маркиране  следва  да бъде  подбрана  така, че да се избегне  подл­  
агането  на стрес  на животните  (може  да е подходящо  
използването  на алтернативен  на студеното  маркиране  метод , 
т.е. използването  на тънка  цветна  линия ). 
Рибите  се преглеждат  всеки  ден през периода  на извършване  на 
теста  и всички  външни  аномалии  (като кръвоизлив , промяна  на 
цвета ) и ненормално  поведение  следва  да бъдат  отбелязвани . 
Всеки  случай  на смърт  се описва  и мъртвата  риба  се отстранява , 
колкото  е възможно  по-скоро . Мъртвата  риба  не се заменя , ако 
скоростта  на концентрация  и плътност  на биомасата  са дост­  
атъчни , за да се избегне  въздействие  върху  растежа  чрез 
изменения  в броя  на рибите  в аквариума . Въпреки  това, 
порцията  храна  е необходимо  да бъде  регулирана . 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Препоръчва  се включването  на статистик , както  при 
планирането , така и при анализа  на теста , доколкото  методът  
за извършване  на теста  позволява  значителни  изменения  при 
планирането , като например  при броя  на аквариумите  за 
тестване , броя  на тестваните  концентрации , броя  на рибите , и 
т.н. С оглед  на наличните  възможности  при планирането  на 
теста , тук не се дават  специфични  насоки  върху  статистическата  
процедура . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1154
 
Скоростта  на растежа  не следва  да се изчислява  за съдове  за 
тестване , когато  смъртността  надвишава  10 %. Обаче  нивото  
на смъртност  се определя  за всички  тествани  концентрации . 
Който  и метод  да се използва  за анализ  на данните , основната  
формула  е специфичната  скорост  на растеж  r за периода  
между  t 1 и t 2 . Това  може  да се определи  по няколко  начина , в 
зависимост  от това, дали  рибата  е отделно  маркирана  или не, и 
от това, дали  се изисква  обикновен  аквариум . 
r 1 ¼ log e W 2 Ä log  e W 1 
t 2 Ä t 1 Ü 100  
r 2 ¼ log e W 2 Ä log  e W 1 
t 2 Ä t 1 Ü 100  
r 3 ¼ log e W 2 Ä log  e W 1 
t 2 Ä t 1 Ü 100  
където , 
r i = е индивидуалната  специфична  скорост  на растежа  
r 2 = е средната  за аквариума  специфична  скорост  на 
растеж  
r 3 = е „псевдо “ специфичната  скорост  на растеж  
W i , W  2 = са теглото  на отделната  риба  при време  съответно  t 1 
и t 2 
log e w i = е логаритъм  на теглото  на отделната  риба  при 
започване  на изследователския  период  
log e W 2 = е логаритъм  на теглото  на отделната  риба  при 
завършване  на периода  на изследване  
log e W 1 = е средната  стойност  на логаритмите  на показателя  w i 
за рибите  в аквариума  в началото  на изследоват­  
елския  период  
log e W 2 = е средната  стойност  на логаритмите  на показателя  
W 2 за рибите  в аквариума  в края  на изследоват­  
елския  период  
t i и t 2 = е времето  (дните ) в началото  и в края  на периода  на 
изследване  
r i , r 2 , r 3 могат  да се изчисляват  за период  от 0—28 дни и когато  
е подходящо  (т.е. когато  се прави  измерване  на четиринадесетия  
ден) за периоди  от 0—14 и 14—28 дни. 
2.1.1.  Анализ  на резултатите , получени  чрез  регресия  (моделиране  
на концентрация —реакция ) 
Този  метод  на анализ  отговаря  на подходящи  математически  
съотношения  между  специфичната  скорост  на растеж  и конце­  
нтрация  и следователно  позволява  изчисляване  на ЕС X т.е. 
всички  необходими  стойности  на ЕС. Използването  на този 
метод  на изчисляване  на r за отделната  риба  (r i ) не е необходимо  
и вместо  това анализът  може  да се основава  на средната  
стойност  за аквариум  r (r  2 ). Последният  метод  се предпочита . 
Подходящ  е и в случаите , когато  се използват  най-малките  
видове . 
Средната  за аквариума  специфична  скорост  на растеж  (r 2 ) се 
чертае  графично  спрямо  концентрацията  с цел да се провери  
отношението  концентрация —реакция . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1155
 
За да се изрази  отношението  между  r 2 и концентрацията , следва  
да се използва  подходящ  модел  и неговият  избор  трябва  да се 
подкрепи  със съответните  аргументи . 
Ако броят  на оцелелите  във всеки  аквариум  риби  не е еднакъв , 
тогава , за да се пригоди  моделът , се натоварва , независимо  дали  
е прост  или не линеален , с цел да се обхванат  групи  с различни  
размер . 
Методът  за подбиране  на модела  трябва  да дава възможност  да 
се направи  оценка  например  на ЕС 20 и на дисперсията  (или 
стандартна  грешка  или доверителен  интервал ). Графиката  на 
изобразения  модел  следва  да бъде  показана  във връзка  с 
данните , така че да може  да се види  в каква  степен  е 
пригоден  моделът  (8) (18) (19) (20).  
2.1.2.  Анализ  на резултатите  от оценката  на LOEC  
Ако текстът  включва  дублиране  на аквариума  на всички  нива  на 
концентрация , оценката  на LOEC може  да се основава  на 
анализа  за променливост  (ANOVA) на средната  за аквариума  
специфична  скорост  на растеж  (вж. точка  2.1), последван  от 
подходящ  метод  (т.е. тестът  на Дънет  и Уилям  (12) (13) (14) 
(21) за сравняване  на средното  г за всяка  концентрация  със 
средното  г за контрола  с цел да се определи  най-ниската  конце­  
нтрация , за която  тази разлика  е значителна  при възможно  ниво  
от 0,05. Ако не се намери  изискваната  предпоставка  за парам­  
етричен  метод , с цел да се преобразуват  данните  към хомогенна  
променливост  преди  извършването  на ANOVA или по време  на 
извършване  на ANOVA за теглото , се обръща  внимание  на 
ненормалното  разпределение  (например  теста  на 
Шапиро —Уилк ) или хетерогенната  променливост  (тест на 
Бартлет ). 
Ако тестът  не включва  дублиращ  аквариум  за всяка  конце­  
нтрация , ANOVA, основана  на аквариума , ще бъде  невъзможна  
или слабочувствителна . В такава  ситуация , се прави  допустим  
компромис  на основата  на ANOVA върху  „псевдо “ специф­  
ичната  скоростна  растеж  r 3 за отделната  риба . 
Средната  r 3 за всяка  тествана  концентрация  може  тогава  да се 
сравни  с средната  r 3 за контролите . LOEC тогава  може  да бъде  
определено , както  преди  това. Трябва  да се признае , че този 
метод  не дава възможност  нито  за допустимост , нито  за 
защита  срещу  разликите  между  аквариумите , извън  тази, която  
се отчита  за разликите  между  отделните  риби . Обаче  практиката  
показва  (8), че променливостта  между  аквариумите  е много  
малка  в сравнение  с тази в аквариумите  (т.е. между  рибите ). 
Ако отделната  риба  не е включвана  в анализа , се посочват  
метода  за определяне  на рязко  отличаваща  се стойност  и 
причините  за неговата  употреба . 
2.2. ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Резултатите  се тълкуват  внимателно , когато  измерените  
токсични  концентрации  на тестваното  вещество  се появят  на 
ниво , близко  до определената  от аналитичния  метод  граница , 
или при полустатичните  тестове , когато  концентрацията  на 
тестваното  вещество  се увеличава  за времето  между  току -що 
приготвения  разтвор  и преди  подновяването . 
2.3. ДОКЛАДВАНЕ  НА ТЕСТА  
Докладването  на теста  трябва  да включва  следната  информация : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1156
 
2.3.1.  Тествано  вещество : 
— физична  природа  и съответните  физико -химични  свойства ; 
— данни  за химична  определеност  включително  чистота  и анал­  
итичен  метод  за проверка  на тестваното  вещество , когато  е 
приложимо . 
2.3.2.  Тествани  видове : 
— научно  наименование , по възможност ; 
— род, размер , доставчик  и предварителна  обработка , и т.н. 
2.3.3.  Условия  за извършване  на теста : 
— използвана  процедура  на тестване  (например  полустатична /­ 
възобновима , при течение , скорост  на концентрацията , 
плътност  на биомасата  и т.н.); 
— проектиране  на теста  (например  брой  на съдовете  за теста , 
тестваната  и дублираща  концентрация , брой  на рибите  в 
отделен  съд); 
— метод  на подготовка  на основния  разтвор  и честотата  на 
сменяне  (трябва  да се посочени  разтварящия  фактор  и 
неговата  концентрация , когато  се използват ); 
— номиналната  тествана  концентрация , средствата  за изчис­  
ляване  на стойностите  и техните  отклонения  при съдовете  
за теста  и метода , чрез който  те са постигнат  и доказат­  
елство , че тези мерки  се отнасят  за концентрацията  на 
тестваното  вещество  в истинския  разтвор ; 
— характеристика  — разтворимост  във вода : рН, твърдост , 
алкалност , температура , концентрация  на разтворен  
кислород , нива  на остатъци  от хлор  (ако се измерени ), 
общо  количество  органичен  въглерод , разтворени  частици , 
соленост  на тестваната  среда  (ако се измерва ) е всички  
други  направени  измервания ; 
— качество  на водата  в съда  за тестване : рН, твърдост , 
температура  и концентрация  на разтворен  кислород ; 
— подробна  информация  за храненето  (например  вида  на 
храната , даденото  количество  и честота ). 
2.3.4.  Резултати : 
— доказателство , че контролната  група  изпълнява  валидния  
критерий  за оцеляване , както  и данни  за смъртността  при 
всички  нива  на тестваната  концентрация ; 
— използваните  статистически  техники  за анализ , статистика , 
основана  на дублирането  или на рибите , обработване  на 
данните  и обосноваване  използването  на тези техники ; 
— таблични  данни  за индивидуалното  и средното  тегло  на 
рибата  за дните  0, 14 (ако са изчислени ) и 28 стойности  от 
средната  за аквариума  или „псевдо “ специфичната  скорост  
на растеж  (при необходимост ) за периодите  0—28 дни или 
по възможност  0—14 и 14—28 дни, 
— резултати  от статистическите  анализи  (т.е. регресионен  
анализ  или ANOVA) за предпочитане  в таблична  и 
графична  форма  и съответно  LOEC ( р = 0,05) и NOEC и 
ЕС Х по възможност  със стандартна  грешка , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1157
 
— разпространяване  на необичайни  реакции  на рибите  и всички  
видими  ефекти , появили  се в резултат  от тестваното  
вещество . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) Solbe J. F. de LG (1987). Environmental Effects of Chemicals 
(CFM 9350 SLD). Report on a UK Ring Test of a Method for 
Studying the Effects of Chemicals on the Growth Rate of Fish. WRc Report No PRD 1388-M/2.
 
(2) Ashley S., Mallett M. J. and Grandy N. J. (1990). EEC Ring 
Test of a Method for Determining the Effects of Chemicals on the Growth Rate of Fish. Final Report to the Commission of the European Communities. WRc Report No EEC 2600-M.
 
(3) Crossland N. O. (1985). A method to evaluate effects of toxic 
chemicals on fish growth. Chemosphere, 14, pp. 1855—1870.  
(4) Nagel R., Bresh H., Caspers N., Hansen P. D., Market M., 
Munk R., Scholz N. and Höfte B. B. (1991). Effect of 3,4- dichloroaniline on the early life stages of the Zebrafish (Brac ­
hydanio rerio): results of a comparative laboratory study. 
Ecotox. Environ. Safety, 21, pp. 157—164.
 
(5) Yamamoto, Tokio. (1975). Series of stock cultures in 
biological field. Medaka (killifish) biology and strains. Keigaku Publish. Tokio, Japan.
 
(6) Holcombe, G. W., Benoit D. A., Hammermeister, D. E., 
Leonard, E. N. and Johnson, R. D. (1995). Acute and long- term effects of nine chemicals on the Japanese medaka (Oryzias latipes). Arch. Environ. Conta. Toxicol. 28, pp. 
287—297.
 
(7) Benoit, D. A., Holcombe, G. W. and Spehar, R. L. (1991). 
Guidelines for conducting early life toxicity tests with Japanese 
medaka (Oryzias latipes). Ecological Research Seriese PA- 600/3-91-063. USE nvironmental Protection Agency, Duluth, Minnesota.
 
(8) Stephan C. E. and Rogers J. W. (1985). Advantages of using 
regression analysis to calculate results of chronic toxicity tests. 
Aquatic Toxicology and Hazard Assessment: Eighth 
Symposium, ASTM STP 891, R. C. Bahner and D. J. Hansen, eds., American Society for Testing and Materials, Philadelphia, pp. 328—338.
 
(9) Environment Canada (1992). Biological test method: toxicity 
tests using early life stages of salmonid fish (rainbow trout, coho salmon, or atlantic salmon). Conservation and Protection, 
Ontario, Report EPS 1/RM/28, 81 pp.
 
(10) Cox D. R. (1958). Planning of experiments. Wiley Edt.  
(11) Pack S. (1991). Statistical issues concerning the design of tests 
for determining the effects of chemicals on the growth rate of fish. Room Document 4, OECD Ad Hoc Meeting of Experts 
on Aquatic Toxicology, WRc Medmenham, UK, 
10—12 December 1991.
 
(12) Dunnett C. W. (1955). A Multiple Comparisons Procedure for 
Comparing Several Treatments with a Control, J. Amer. Statist. Assoc, 50, pp. 1096—1121.
 
(13) Dunnett C. W. (1964). New tables for multiple comparisons 
with a control. Biometrics, 20, pp. 482—491.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1158
 
(14) Williams D. A. (1971). A test for differences between 
treatment means when several dose levels are compared with 
a zero dose control. Biometrics 27, pp. 103—117.  
(15) Johnston, W. L., Atkinson, J. L., Glanville N. T. (1994). A 
technique using sequential feedings of different coloured food to determine food intake by individual rainbow trout, Oncor ­
hynchus mykiss: effect of feeding level. Aquaculture 120, pp. 
123—133.
 
(16) Quinton, J. C. and Blake, R. W. (1990). The effect of feed 
cycling and ration level on the compensatory growth response in rainbow trout,  Oncorhynchus mykiss . Journal of Fish 
Biology, 37, pp. 33—41.
 
(17) Post, G. (1987). Nutrition and Nutritional Diseases of Fish. 
Chapter IX in Testbook of Fish Health. T.F.H. Publications, Inc. Neptune City, New Jersey, USA. 288 pp.
 
(18) Bruce, R. D. and Versteeg D. J. (1992). A statistical procedure 
for modelling continuous toxicity data. Environ. Toxicol. 
Chem. 11, pp. 1485—1494.  
(19) DeGraeve, G. M., Cooney, J. M., Pollock, T. L., Reichenbach, 
J. H., Dean, Marcus, M. D. and McIntyre, D. O. (1989). 
Precision of EPA seven-day fathead minnow larval survival 
and growth test; intra and interlaboratory study. Report EA- 6189 (American Petroleum Institute Publication, No 4468). Electric Power Research Institute, Palo Alto, CA.
 
(20) Norbert-King T. J. (1988). An interpolation estimate for 
chronic toxicity: the Icp approach. USE nvironmental 
Protection Agency. Environmental Research Lab., Duluth, Minnesota. Tech. Rep. No 05-88 of National Effluent Toxicity Assesment Center. Sept. 1988. 12 pp.
 
(21) Williams D. A. (1972). The comparison of several dose levels 
with a zero dose control. Biometrics 28, pp. 510—531.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1159
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1160
 ▼B 
Приложение  1 
ВИДОВЕ  РИБИ , ПРЕПОРЪЧАНИ  ЗА ТЕСТВАНЕ  И ПОДХОДЯЩИ  УСЛОВИЯ  ЗА ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТА  
Видове  Препоръчител  на 
температура  
( o C) Излагане  на 
светлина  
(в часове ) Препоръчително  
първоначално  
тегло  на рибата  
(g) Изисквана  
прецизност  на 
измерването  Скорост  на 
концентрацията  
(g/l) Плътност  на 
биомасата  
(за литър ) Храна  Продължителност  
на теста  
(дни) 
Препоръчани  видове : 
Oncorhynchus mykiss  
дъгова  пъстърва  12,5—16,0 12—16 1—5 Най-близо  до 
100 mg 1,2—2,0 4 Патентовани  пържени  храни  
от сушени  сьомги  ≥ 28 
Други  добре  документирани  
видове :species:  
Danio rerio  
риба  зебра  21—25 12—16 0,050—0,100 Най-близо  до 
1 mg 0,2—1,0 5—10 Сурова  храна  (Brachionus 
Artemia ) ≥ 28 
Oryzias latipes  
оризова  риба  (Медака ) 21—25 12—16 0,050—0,100 Най-близо  до 
1 mg 0,2—1,0 5—0 Сурова  храна  (Brachionus 
Artemia ) ≥ 28
Приложение  2 
НЯКОИ  ХИМИЧНИ  ХАРАКТЕРИСТИКИ  НА ДОПУСТИМАТА  
РАЗТВОРИМОСТ  ВЪВ  ВОДА  
Вещество  Концентрация  
Твърди  частици  < 20 mg/l 
Общ  органичен  въглерод  < 2 mg/l 
Нейонизиран  амоняк  < 1 μg/l 
Утайка  от хлор  < 10 μg/l 
Общи  органофосфорни  пестициди  < 50 ng/l 
Общи  органохлоридни  пестициди  плюс  поли­  
хлоринатен  бифенил  < 50ng/l 
Общ  органичен  хлор  < 25 ng/l  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1161
 
Приложение  3 
логаритмични  серии  на концентрации , подходящи  за извършвоне  на токсичен  тест (9) 
Колона  (номер  на концентрация  между  100 и 10, или между  10 и 1)(*) 
1 2 3 4 5 6 7  
100 100 100 100 100 100 100 
32 46 56 65 68 72 75 10 22 32 40 46 52 56 
3,2 10 18 25 32 37 42 
1,0 4,6 10 16 22 27 32 
2,2 5,6 10 15 19 24 1,0 3,2 6,3 10 14 18 
1,8 4,0 6,8 10 13 1,0 2,5 4,6 7,2 10 
1,6 3,2 5,2 7,5 
1,0 2,2 3,7 5,6 
1,5 2,7 4,2 1,0 1,9 3,2 
1,4 2,4 1,0 1,8 
1,3 
1,0
 
(*) Серия  от пет (и повече ) успешни  концентрации  може  да бъде  избрана  от една  колона . Средните  точки  между  конце­  
нтрациите  в колона  (х) се намират  в колона  (2х + 1). Изброените  стойности  могат  да представят  концентрации , изразени  
като процент  на количество  или като тегло  (mg/1 или μg/l). Стойностите  могат  да се умножават  или делят  на всички  
степени  на 10, както  е подходящо . Колона  1 може  да се използва , ако е имало  значителна  несигурност  за нивото  на 
токсичност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1162
 
В.15. РИБИ , КРАТКОСРОЧЕН  ТЕСТ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ПРИ  
ЕМБРИОНИТЕ  И ИНДИВИДИТЕ  В СТАДИЙ  НА 
ХРАНЕНЕ  ОТ ЖЪЛТЪЧНАТА  ТОРБИЧКА  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изследване  на субхроничната  орална  токсичност  е 
точно  копие  на ОИСР  TG 212 (1998).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  краткосрочен  метод  за тестване  токсичността  върху  
рибните  ембриони  и индивидите  в стадий  на хранене  от 
жълтъчната  торбичка  е краткосрочен  тест, при който  се 
излагат  етапите  на живот  от новоизлюпеното  яйце  до края  на 
стадия  на хранене  от жълтъчната  торбичка . Не се извършва  
хранене  при тестовете  върху  ембрионите  и индивидите  в 
стадий  на хранене  от жълтъчната  торбичка  и следователно  
тестът  трябва  да бъде  приключен , докато  новоизлюпените  все 
още се хранят  от жълтъчната  торбичка . 
Очаква  се тестът  да определи  леталните  и, в ограничена  степен , 
сублеталните  въздействия  на химикалите  върху  определени  
стадии  и тествани  видове . Този  тест дава полезна  информация , 
че може : а) да се образува  мост  между  леталните  и сублетални  
тестове , б) да се използва  като екранен  тест или за тест на целия  
ранен  стадий  на живот  или за тест на хроничната  токсичност , и 
в) да се използва  като тестване  на видове , при които  техниките  
на отглеждане  не са достатъчно  добре  развити  за да покрият  
периода  на промените  от ендогенно  до екзогенно  хранене . 
Следва  да се има предвид , че само  тестовете , които  
инкорпорират  в себе си всички  стадии  от цикъла  на живот  на 
рибите , обикновено  са надеждни  при даване  на точна  преценка  
за хроничната  токсичност  на химикалите  при рибите , и че 
всякакво  редуциране  на излагането  с оглед  на жизнените  
стадии  може  да намали  чувствителността  и така да се подцени  
хроничната  токсичност . Следователно  се очаква  тестът  върху  
ембриона  и новоизлюпените  да е по-малко  чувствителен  от 
теста  за целия  ранен  стадий  на живот , по-специално  по 
отношение  на химикалите  с висока  липофилност  (log P  ow > 4) 
и химикали  със специфичен  начин  на действие  на токсичността . 
Обаче  по-малките  разлики  в чувствителността  между  двата  теста  
може  да се очакват  при химикали  с неспецифичен , наркотичен  
начин  на действие  (1). 
Преди  публикуването  на този тест, по-голямата  част от опита  с 
ембриони  и новоизлюпени  е придобит  със сладководните  риби  
Danio rerio  (риба  зебра ) Hamilton-Buchanan (telepstei, cyprinidae 
— общо  наименование  на риба  зебра ). По-подробни  насоки  по 
извършването  на този тест за тези видове  е следователно  даден  в 
приложение  1. Това  не ограничава  употребата  на други  видове , 
с които  също  има натрупан  опит  (таблици  IA и IБ). 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Най-ниска  концентрация  на въздействие  (LOEC):  е най- 
ниската  тествана  концентрация  от тестваното  вещество , при 
която  се наблюдава  значително  въздействие  от страна  на 
веществото  (при р < 0,05), при сравнение  с контролата . 
Въпреки  това, всички  тествани  концентрации  над LOEC трябва  
да имат  вредно  въздействие  равно  на или по-голямо  от това, 
наблюдавано  при LOEC.  
Концентрация  на ненаблюдавано  въздействие  (NOEC) : това е 
тестваната  концентрация  непосредствено  под LOEC.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1163
 
1.3. ПРИНЦИП  НА ПРОВЕЖДАНЕ  НА ТЕСТА  
Ембрионът  и новоизлюпените  при рибите  се излагат  на различна  
степен  на концентрация  на тестваното  вещество , разтворено  във 
вода . По протокол  е възможен  избор  между  полустатичната  и 
потоковата  процедурата . Изборът  зависи  от вида  на тестваното  
вещество . Тестът  започва  чрез поставяне  на оплоденото  яйце  в 
тестовите  камери  изследване  и се определя  точно  преди  
жълтъчните  торбички  на всички  ларви  във всички  помещения  
за тестване  да са напълно  абсорбирани  и преди  да започне  
измиране  в резултат  на пълен  глад при контролите . Леталните  
и сублетални  ефекти  се оценяват  и се сравняват  с контролния  
параметър  с цел да се определи  най-ниското  наблюдавано  възде­  
йствие  на концентрация  и следователно  ненаблюдаваното  възде­  
йствие  на концентрацията . Друга  възможност  е те да се 
анализират  чрез използване  на метод  на регресия  с цел да се 
извърши  оценка  на концентрацията , която  би причинила  
дадения  процент  въздействие  (т.е. LC/ЕС x , където  х е 
определено  въздействие  в проценти ). 
1.4. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ТЕСТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Следва  да са на разположение  и резултатите  от теста  за акутната  
токсичност  (виж метод  В.1), за предпочитане  извършен  с 
избраните  за този тест видове . Резултатите  могат  да са 
полезни  при избора  на подходяща  степен  на тествана  конце­  
нтрация  при теста  в ранните  стадии  на живот . Следва  да са 
известни  разтворимостта  във вода  (включително  разтворимост  
във тестваната  вода ) и парното  налягане  на тестваното  
вещество . Следва  да е на разположение  и надежден  аналитичен  
метод  за характеризиране  на веществото  в тествания  разтвор , 
чрез известна  и отчетена  точност  и чрез ограничение  на 
разпространението . 
Информацията , която  е необходима  за създаването  на условията  
на провеждане  на теста , включва  структурната  формула , чистота  
на веществото , устойчивост  на светлина , устойчивост  при 
условията  на теста , рКа, P  ow и резултатите  от теста  за 
готовност  за биоразграждане  (вж. метод  В.4). 
1.5. ВАЛИДНОСТ  НА ТЕСТА  
Тестът  е валиден , ако са налице  следните  условия : 
— цялостно  оцеляване  на оплодените  яйца  в контролните  групи  
и по отношение  на съдовете  само  с разтвор , то трябва  да 
бъде  по-голямо  или равно  на ограниченията , определени  в 
приложения  2 и 3; 
— концентрацията  на разтворен  кислород  трябва  да бъде  между  
60 и 100 % от степента  на въздушно  насищане  по време  на 
извършването  на теста ; 
— температурата  на водата  не трябва  да се различава  с повече  
от ± 1,5  o С между  тестовите  камери  или през последователни  
дни по време  на теста , и следва  да е в температурния  обхват , 
определен  за тестваните  видове  (приложения  2 и 3). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1164
 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТА  
1.6.1.  Тестови  камери  
Може  да се използват  всякакъв  вид стъклени  или химически  
неутрални  съдове . Размерите  на съдовете  следва  да са дост­  
атъчно  широки , за да съответстват  на плътността  на биомасата  
(вж. точка  1.7.1.2). Препоръчва  се помещенията , в които  се 
извършва  тестът , да са разположени  на случаен  принцип  в 
зоната  на извършване  на теста . Когато  има систематични  възде­  
йствия  в лабораторията , които  могат  да се контролират  чрез 
блокиране , се предпочита  подреждане  на случаен  принцип  на 
стендовете  за изпитване , като във всеки  стенд  са представени  
всички  извършващи  се обработки , преди  напълно  хаотичното  
подреждане . Ако се използва  блокиране , то се взима  предвид  
при последващи  анализи  на данните . Тестовите  камери  следва  
да са защитени  от нежелани  смущения  по време  на работата . 
1.6.2.  Избор  на видове  риби  
Видовете  риби , които  се препоръчват , са посочени  в таблица  
1А. Това  не ограничава  използването  на други  видове  
(например  посочените  в таблица  1Б), но се налага  прис­  
пособяване  на процедурата  за извършване  на теста , за да се 
получат  подходящите  условия . В този случай  следва  да се 
отчита  основанието  за избор  на отделните  видове  и на 
експерименталния  метод . 
1.6.3.  Съхраняване  на стадо  риби  за размножаване  
Подробности  относно  съхраняването  на стадо  при задовол­  
ителни  условия  могат  да се намерят  в ОИСР  TG 210 (  1 ) и в 
препратки  към използваната  литература  (2) (3) (4) (5) (6).  
1.6.4.  Третиране  на ембрионите  и ларвите  
Ембрионите  и ларвите  могат  да се излагат , вътре  в основния  съд 
за извършване  на теста , в по-малки  съдове , имащи  странични  и 
дънни  отвори , за да се позволи  оттичане  на тествания  разтвор  
през съда . Може  да се предизвика  слабо  течение  през тези малки  
съдове  чрез спирането  им с ръчка , монтирана  да премества  съда  
нагоре  и надолу , но запазвайки  винаги  организмите  потопени  
под вода ; може  да се използва  система  за промиване  чрез 
сифон . Оплодените  яйца  на риби  от семейството  на сьомгата  
могат  да се запазват  с решетки  и сито  с достатъчно  широки  
отвори , които  да позволяват  на ларвите  да преминават  през 
тях след  излюпването . Целесъобразна  е употребата  на пипетка  
за цялостно  всекидневно  възстановяване  на ембрионите  и 
ларвите  при полустатичните  тестове  (вж. параграф  1.6.6).  
Когато  контейнерите  с яйца , решетките  и ситата  са били  
използвани , за да се задържат  яйцата  в основния  съд за 
извършване  на теста , тези ограничители  се премахват  след  
излюпването  на ларвата  ( 1 ), c изключение  на ситата , които  
следва  да се задържат , за да се предотврати  изпускането  на 
рибите . Ако има нужда  от прехвърляне  на ларвите , те следва  
да не се излагат  на въздух  и не следва  да се използват  мрежи , да 
за се освободи  рибата  от контейнерите  с яйцата  (такава  предпа­  
зливост  може  да не е наложителна  при някои  не толкова  чувств­  
ителни  видове , например  при шарана ). Времетраенето  на това 
преместване  се променя  в зависимост  от видовете  и това прем­  
естване  не винаги  е необходимо . За полустатичните  техники  
могат  да се използват  чаши  от химическо  устойчиво  стъкло  и 
плитки  съдове  и ако е необходимо , оборудвани  със сито , което  е 
леко  повдигнато  над ръба  на чашата . Ако обемът  на тези съдове  
е достатъчен  за условията  за плътност , (вж. 1.7.1.2) не е необ­  
ходимо  преместване  на ембрионите  и ларвите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1165  
( 1 ) ОИСР , Париж , 1992 г., Ръководство  за извършване  на изследвания  210, „Риби , 
изследване  на токсичността  в началните  стадии “.
 1.6.5.  Вода  
Всички  води , които  отговарят  на химичните  характеристики  за 
приемливо  разреждане  с вода , както  са изброени  в приложение  4 
и в които  тестваните  видове  показват  контролирана  жизнена  
способност  най-малко  толкова  добра , колкото  описаната  в прил­  
ожения  2 и 3, са води , подходящи  за използване  при 
изследването . Необходимо  е постоянно  качество  на водата  по 
време  на изследването . РН следва  да остане  в границите  от 
± 0,5 рН на единица . За да се гарантира , че водата , която  
служи  за разтвор , няма  да повлияе  прекомерно  на резултатите  
от изследването  (например  чрез образуване  на комплексни  
съединения  на тестваното  вещество ) или да навреди  на стадото  
риби , анализите  се правят  на интервали . Следва  да се измерват  
тежките  метали  (например  Сu, Pb, Zn, Hg, Cd и Ni), основните  
аниони  и катиони  (например  Сa, Mg, Na, K, Cl и SO  4 ), 
пестициди  (например  органофосфор , и общо  съдържание  на 
органохлорни  пестициди ), общо  съдържание  на органичен  
въглерод  и разтворими  частици , например  на всеки  три 
месеца , в случаите , когато  водата , която  се използва  като 
разтвор , е известно , че има относително  постоянни  качества . 
Ако качеството  на водата  е постоянно  поне  за период , по- 
голям  от една  година , изчисленията  могат  да се правят  по- 
рядко  и да се увеличат  интервалите  (например  на всеки  шест  
месеца ). 
1.6.6.  Разтвори  за теста  
Разтворите  за теста  при избрана  концентрация  се приготвят  чрез 
разреждане  на основния  разтвор . 
Основният  разтвор  се приготвя  за предпочитане  чрез просто  
смесване  и разбъркване  на тестваното  вещество  във водата , 
която  се използва  като разтвор , като се използват  механични  
средства  (например  разклащане  или с помощта  на ултразвук ). 
За постигане  на подходящо  концентриран  основен  разтвор , 
могат  да се използват  колоните  на насищане /разтворимост . 
Доколкото  е възможно  следва  да се избегне  употребата  на разт­  
ворители  и диспергиращи  (разтварящи ) агенти ; Обаче  може  в 
някои  случаи  да наложи  употребата  на такива  съединения  с 
цел да се получи  подходящ  концентриран  основен  разтворител . 
Примери  за подходящи  разтворители  са ацетон , етанол , метанол , 
диметилсулфооксид , диметилформамид  и триетиленгликол . 
Примери  за подходящи  диспергиращи  агенти  са Cremophor 
RH40, Tween 80, метилцелулоза  0,01 % и НСО -40. Внимава  се 
при употребата  на готови  биоразграждащи  вещества  (например  
ацетон ) и/или високо  летливи  съединения , тъй като могат  да 
причинят  проблеми  с бактериалното  натрупване  при потоковите  
тестове . Когато  се използва  разтварящ  агент , не трябва  да оказва  
значително  въздействие  върху  жизнената  способност , нито  да 
има видими  вредни  ефекти  върху  ранните  стадии  от жизнения  
цикъл , проявени  при контролите  само  с разтвор . Въпреки  това, 
следва  да се положат  всички  усилия , за да се избегне  употребата  
на такива  материали . 
При полустатичните  техники  могат  да се следват  две различни  
процедури  за възстановяване : или i) се приготвят  нови  разтвори  
за изследване  в чисти  съдове  или жизненоспособните  яйца  и 
ларви  внимателно  се пренасят  в нови  съдове  с малко  количество  
от стария  разтвор , избягвайки  излагането  на въздух , или И) 
тестваните  организми  се запазват  в съдовете , докато  поне  три 
четвърти  от водата  за теста  не се смени . Честотата  на средното  
подновяване  ще зависи  от устойчивостта  на тестваното  
вещество , но се препоръчва  всекидневна  смяна  на водата . Ако 
от първоначалните  тестове  за устойчивост  (вж. точка  1.4), е 
видно , че концентрацията  на тестваното  вещество  не е 
стабилна  (т.е. извън  номиналните  стойностите  от 80—120 % 
или пада  под 80 % от измерената  първоначална  концентрация ) 
по време  на периода  на смяна , то трябва  да се предвиди  
използването  на потоков  тест. Във всеки  случай  следва  да се 
полагат  грижи  за избягване  на стрес  при ларвите  по време  на 
действията  по смяна  на водата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1166
 
За потоковите  тестове  се изисква  система , която  постоянно  
дозира  и разрежда  основния  разтвор  на тестваното  вещество  
(например  измерваща  помпа , пропорционален  разредител , напо­  
ителни  системи ), за да се прехвърлят  серии  от концентрации  
към тестовите  камери . Параметрите  на изтичането  на основния  
разтвор  и разредената  вода  се проверяват  на интервали , за 
предпочитане  всеки  ден, по време  на извършването  на теста  и 
през това време  не се променя  с повече  от 10 %. Счита  се, че 
скорост  на течението  равна  на поне  пет обема  на помещението  
за тестване  за 24 часа е подходяща . 
1.7. ПРОЦЕДУРА  
Публикуваните  научни  изследвания  дават  полезна  информация  
за извършване  на теста  при рибния  ембрион  и новоизлюпеното , 
като някои  примери  са включени  в раздела  за използвана  
литература  към настоящия  текст  (7) (8) (9).  
1.7.1.  Условия  на експозиция  
1.7.1.1.  Продължителност  
За предпочитане  е изследването  да започне  до 30 минути  след  
като яйцето  е било  оплодено . Ембрионите  се потапят  
предварително  в разтвора  или колкото  е възможно  по-скоро  
след  започване  стадия  на делене  на бластодиск  и при всички  
случаи  преди  началото  на стадия  на гаструлата . За яйца , 
получени  от търговски  доставчик , може  да не е възможно  
тестът  да започне  веднага  след  оплождането . Тъй като чувствит­  
елността  на теста  може  да бъде  сериозно  засегната  чрез забавяне  
началото  на изследването , самото  тестване  следва  да започне  в 
период  от осем  часа след  оплождането . Тъй като ларвите  не се 
хранят  по време  на експозиционния  период , тестът  следва  да 
завърши  точно  преди  жълтъчните  торбички  на всички  ларви  
във всички  камери  за извършване  на изследването  да са се 
абсорбирали  напълно , или преди  да се появи  смъртност  в 
резултат  на глад при контролните  групи . Продължителността  
зависи  от видовете , които  се използват  при изследването . 
Някои  препоръки  относно  продължителността  са дадени  в прил­  
ожения  2 и 3. 
1.7.1.2.  Зареждане  
Броят  на оплодените  яйца  в началото  на изследването  следва  да 
е достатъчен , за да отговаря  на статистическите  изисквания . 
През  време  на третирането  те следва  да са разпределени  на 
случаен  принцип  и поне  30 оплодени  яйца ,разделени  по равно  
(или на колкото  е възможно  по-равно , като се има предвид , че 
може  да е трудно  да се постигне  еднаквост  при стадата  риби , 
когато  се използват  някои  видове ), следва  да бъдат  използвани  
за всяка  концентрация  между  поне  три дублиращи  камери  за 
тестване . Скоростта  на зареждане  (биомаса  на обем  тестван  
разтвор ) следва  да е достатъчно  ниска  с цел да се поддържа  
без вентилация  концентрация  на разтворения  кислород  от поне  
60 % от степента  на въздушно  насищане . За потоковия  тест се 
препоръчва  скорост  на дозиране  не по-голяма  от 0,5 g/1 за 24 
часа и не повече  от 5 g/1 от разтвора  по всяко  време  (2). 
1.7.1.3.  Светлина  и температура  
Продължителността  на излагане  на светлина  и водната  
температура  следва  да са подходящи  за тестваните  видове  (прил­  
ожения  2 и 3). За наблюдение  на температурата  може  да се 
окаже  подходящо  използването  на допълнителни  съдове  за 
тестване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1167
 
1.7.2.  Тествани  концентрации  
Обикновено  се изискват  пет концентрации  на тестваното  
вещество  разпределени  с постоянен  коефициент , който  не 
превишава  3,2. Кривата  относно  LC  50 за периода  на излагане  
при акутното  проучване  следва  да се има предвид , когато  се 
избира  обхвата  на тестваната  концентрация . Употребата  на по- 
малко  от пет концентрации , например  при тест за определяне  на 
граници , както  и по-тесни  интервали  на концентрация , може  да 
са подходящи  при определени  обстоятелства . Представят  се 
причините , довели  до използването  на по-малко  от пет конце­  
нтрации . Не е нужно  да се изследват  концентрации  на 
тестваното  вещество  по-високи  от LC  50 или 100 mg/1 за 96 
часа, независимо  кое от двете  е по-ниско . Веществата  не 
трябва  да се тестват  над техния  лимит  на разтворимост  на 
веществото  във водата  за изследване . 
Когато  коефициентът  на разтворимост  се използва  при подг­  
отовката  на основния  разтвор  (вж. точка  1.6.6), неговата  
последна  концентрация  в съда  за тестване  следва  да не бъде  
по-висока  от 0,1 ml/1 и следва  да бъде  същата  при всички  
съдове  за тестване . 
1.7.3.  Контроли  
Една  контролна  серия  с водата , която  се използва  като разтвор  
(дублирана  при необходимост ) и, ако е уместно , една  контролна  
серия , съдържаща  разтворител , следва  да бъдат  включени  
допълнително  към тестваните  серии . 
1.7.4.  Честота  на аналитичните  установявания  и измервания  
По време  на теста  концентрациите  на тестваното  вещество  се 
определят  на равни  интервали  от време . 
При полустатичните  тестове , където  концентрацията  на 
тестваното  вещество  се очаква  да остане  в номиналната  
стойност  от ± 20 %, ( т.е. в стойности  80—120 %; виж точки  
1.4 и 1.6.6), се препоръчва  като минимум  да се анализират  най- 
високата  и най-ниската  концентрация  на теста , когато  след  като 
са приготвени  и незабавно  преди  възстановяването  в поне  три 
момента , разположени  равномерно  по време  на теста  (т.е. 
анализи  се правят  върху  образец  от същия  разтвор  — когато  е 
току -що приготвен  и възстановен ). 
За тестове , където  концентрацията  на тестваното  вещество  не се 
очаква  да остане  в номиналната  стойност  от ± 20 % ( на основата  
на данни  за стабилността  на тестваното  вещество ), е необходимо  
да се анализират  всички  тествани  концентрации , след  като са 
приготвени  и при подновяването , но като се следва  същия  
режим  (т.е. в поне  три момента , разположени  равномерно  по 
време  на теста ). Определянето  на концентрацията  на 
веществото , което  се изследва , преди  подновяването , е необ­  
ходимо  да се извърши  само  при един  от дублиращите  съдове  
за всяка  концентрация . Определянето  на концентрациите  се 
прави  с разлика  от не повече  от седем  дни. Обаче  ако е 
налице  доказателство , което  показва , че концентрацията  на 
тестваното  вещество  в разтвора  е била  задоволително  постигната  
при ± 20 % от номиналната  стойност  или е измерена  първон­  
ачална  концентрация  на тестваното  вещество  по време  на 
извършването  на изследването , тогава  резултатите  могат  да се 
основават  на номинала  или на измерените  първоначални  стой­  
ности . 
За потокови  тестовете , подобен  режим  на взимане  на проби  е 
подходящ  като този, описан  за полустатичните  тестове , (но 
измерване  на „стари “ разтвори  не се прилага  в този случай ). 
Обаче  ако продължителността  на теста  е повече  от седем  дни, 
може  да се препоръча  увеличаване  броя  на вземането  на пробите  
през първата  седмица  (например  три измервания ) за да се 
гарантира , че концентрациите  от тестваното  вещество  са 
останали  устойчиви . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1168
 
Може  да се появи  нужда  от центрофугиране  или филтриране  на 
пробите  (например  използвайки  0,45 μm размер  на порите ). 
Обаче , тъй като нито  центрофугирането , нито  филтрирането  
разделят  винаги  небиологичните  частици  от биологичните , 
пробите  може  да не подлагат  на тези третирания . 
По време  на теста  следва  да бъдат  измервани  разтвореният  
кислород , рН и температурата  от всеки  съд за тестване . 
Общата  твърдост  и соленост  (ако е подходящо ) се измерват  
при контролните  органи  и съда  с най-висока  концентрация . 
Като  минимум  разтвореният  кислород  и солеността  (ако е 
подходящо ) се измерват  три пъти  (в началото , средата  и края  
на теста ). При полустатичните  тестове  се препоръчва  разт­  
вореният  кислород  да се измерва  по-често , за предпочитане  
преди  и след  всяка  смяна  на водата  или поне  веднъж  на 
седмица . Измерването  на рН става  в началото  и след  всяка  
смяна  на водата  при полустатичните  тестове  и поне  веднъж  в 
седмицата  при потоковите  тестове . Твърдостта  и алкалността  се 
измерват  поне  веднъж  по време  на теста . Температурата  следва  
да се измерва  всекидневно  и за предпочитане  се наблюдава  
продължително  поне  при един  съд по време  на теста . 
1.7.5.  Наблюдения  
1.7.5.1.  Стадий  на развитие  на ембриона  
Стадият  на развитие  на ембриона  (т.н. гаструла ) се проверява  
колкото  може  по-прецизно  в началото  на излагането  на 
тестваното  вещество . Това  може  да се направи  като се 
използват  представителни  проби  на яйца , запазени  и изчистени  
по подходящ  начин . Използваната  литература  също  съдържа  
данни  за описанието  и илюстрирането  на стадиите  на развитие  
на ембриона . 
1.7.5.2.  Излюпване  u жизнена  способност  
Наблюденията  върху  излюпването  и жизнената  способност  се 
правят  поне  веднъж  на ден и се записва  броя  на излюпените  
индивиди . Желателно  е да се правят  по-чести  наблюдения  в 
началото  на теста  (на всеки  30 минути  по време  на първите  
три часа), тъй като в някои  случаи  времето  за оцеляване  може  
да бъде  от по-голямо  значение , отколкото  броят  на мъртвите  
екземпляри  (например  при остри  токсични  въздействия ). 
Мъртвите  ембриони  и ларви  се отстраняват  веднага  след  като 
са забелязани , тъй като могат  да се разложат  бързо . При 
отстраняването  на мъртвите  индивиди  се полага  изключителна  
грижа  да не се ударят  и да не се наранят  физически  близк­  
остоящите  яйца /ларви , които  са изключително  деликатни  и 
чувствителни . Критериите  за смърт  варират  в зависимост  от 
стадия  на съществуване : 
— при яйцата : по специално  в ранните  стадии  това са: 
забелязана  загуба  на прозрачност  и изменение  в 
оцветяването , причинени  от сгъстяване  и/или утаяване  на 
протеини , водещи  до бял непрозрачен  вид, 
— при ембрионите : липса  на движенията  на тялото  и/или 
липса  на сърдечен  ритъм  и/или непрозрачно  обезцветяване  
при вид, чиито  ембриони  са нормално  прозрачни , 
— при ларвите : неподвижност  и/или липса  на дихателни  
движения  и/или липса  на сърдечен  ритъм  и/или бял 
непрозрачно  оцветяване  на централната  нервна  система  
и/или липса  на реакции  при механични  стимуланти . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1169
 
1.7.5.3.  Аномалия  във външния  вид 
Броя  на ларвите , които  показват  аномалии  във формата  на 
тялото  и/или пигментацията  и стадия  на абсорбция  на 
жълтъчната  торбичка  се записват  на подходящи  интервали , 
зависещи  от продължителността  на теста  и вида  на описаната  
аномалия . Следва  да се отбележи , че анормалните  ембриони  и 
ларви  се появяват  по нормален  начин  и могат  да бъдат  от 
порядъка  на няколко  процента  от контролните  серии  при 
някои  видове . Анормалните  животни  следва  да се отстраняват  
от съда  за тестване  само  при смърт . 
1.7.5.4.  Анормално  държание  
Анормалните  състояния , като хипервентилация , некоординирано  
плуване  и нетипично  състояние  на покой , се записват  на 
адекватни  интервали  в зависимост  от продължителността  на 
теста . Тези  ефекти , въпреки  трудността  да се определи  тяхното  
количество , когато  се наблюдават , могат  да помогнат  при 
тълкуването  на данните  за смъртността  т.е. да дадат  информация  
за начина , по който  се проявява  токсичното  действие  на 
веществото . 
1.7.5.5.  Дължина  
В края  на теста , се препоръчва  измерване  дължината  на 
индивидите ; може  да се използва  стандартна , разклонена  и 
обща  дължина . Ако обаче  се появят  гниене  на опашния  
плавник  и разяждане  на перката , се използва  стандартната  
дължина . В повечето  случаи  при добре  извършените  тестове , 
коефициентът  на променливост  на дължината  между  
дублиращите  серии  и контролните  е ≤ 20 %.  
1.7.5.6.  Тегло  
В края  на теста  може  да се измери  индивидуалното  тегло ; тегло  
в сухо  състояние  (24 часа при 60  o С) е за предпочитане  пред  
мокро  тегло  (пълно  изсушаване ). В повечето  случаи  при добре  
извършените  тестове , коефициентът  на променливост  на теглото  
между  дублиращите  серии  и контролните  е ≤ 20 %.  
Тези  наблюдения  ще повлияят  на някои  или всички  на следните  
данни , които  са на разположение  за статистическия  анализ : 
— обща  смъртност ; 
— брой  на здравите  ларви  на края  на теста ; 
— време  на започване  на излюпването  и края  му (т.е. 90 % 
излюпване  във всяка  репликация ), 
— брой  на ларвите , които  се излюпват  всеки  ден; 
— дължина  (и тегло ) на оцелелите  животни  в края  на теста ; 
— брой  на ларвите , които  са деформирани  или са с анормален  
вид; 
— брой  на ларвите , проявили  анормално  държание . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1170
 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Препоръчва  се да бъде  включен  и статистик  и при 
проектирането  и при анализа  на теста , тъй като методът  
позволява  значителна  променливост  при проектирането  на 
експеримента  като например  брой  на тестовите  камери , брой  
на тестваните  концентрации , начален  брой  на оплодените  яйца  
и измерените  параметри . От гледна  точка  на наличните  
възможности  при проектирането  на теста  тук не се дават  спец­  
ифични  насоки  по статистическите  процедури . 
Ако LOEC/NOECs трябва  да се измерват , необходимо  е да се 
анализира  променливостта  във всяка  дублираща  серия , като се 
използва  анализ  на средното  отклонение  (ANOVA) или 
процедури  за създаване  на таблици  за непредвидените  случаи . 
С цел да се направи  многократно  сравнение  между  резултатите  
на индивидуалните  концентрации  и тези за контролните  органи , 
метода  на Дънет  може  да бъде  полезен  (12) (13). Други  полезни  
примери  също  са на разположение  (14) (15). Размерът  на възде­  
йствието , който  може  да се установи  като се използва  ANOVA 
или други  процедури  (т.е. показател  на теста ), се измерва  и 
отчита . Следва  да се отбележи , че не всички  наблюдения , 
изброени  в точка  1.7.5.6, са подходящи  за статистическия  
анализ , използващ  ANOVA. Например  общата  смъртност  и 
броят  на здравите  ларви  в края  на теста  се анализират , като се 
използват  безпогрешни  методи . 
Ако трябва  да се измерват  LС/ЕС х ,подходяща  крива (и), 
например  логистична  крива  следва  да се нагоди , така че да 
съответства  точно  на данните , които  са от интерес  за 
изследването , чрез използване  на статистически  метод  като 
последните  квадрати  или нелинейни  последни  квадрати . 
Кривата (ите) се измерва  така, че съотношението  LC/EC  X и 
неговите  стандартни  грешки  да могат  да се изчислят  директно . 
Това  много  ще улесни  изчисляването  на границите  на сигурност  
около  LC/EC  X . Освен  ако няма  основателни  причини  да се 
предпочетат  различни  граници  на сигурност , позоваването  
става  при двустранна  сигурност  от 95 %. Процедурите  по съотв­  
етствие  следва  преди  всичко  да предоставят  средството  за 
оценяване  значението  на липсата  на съответствие . Могат  да се 
използват  графичните  методи  на съответстващи  си криви . 
Регресионният  анализ  е подходящ  за всички  наблюдения , 
изброени  в точка  1.7.5.6  
2.2. ТЪЛКУВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Резултатите  следва  да се тълкуват  внимателно , когато  
измерените  токсични  концентрации  в тестваните  разтвори  са 
на ниво , което  е близко  до границата  на разпространение  на 
аналитичния  метод . Тълкуването  на резултатите  за конце­  
нтрациите  над водната  разтворимост  на веществата  също  се 
прави  внимателно . 
2.3. ОТЧИТАНЕ  НА ТЕСТА  
Резултатите  от теста  трябва  да включват  следната  информация : 
2.3.1.  Тествано  вещество  
— физична  природа  и съответните  физико -химични  свойства ; 
— данни  за химична  определеност , включително  чистота  на 
състава  и аналитичен  метод  за проверка  на тестваното  
вещество , при необходимост . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1171
 
2.3.2.  Тествани  видове : 
— научно  наименование , род, брой  на родителски  риби  (т.е. 
колко  женски  са използвани , за да се осигури  необходимия  
брой  яйца  за теста ), източник  и метод  на събиране  на 
оплодените  яйца , и последващите  излюпвания . 
2.3.3.  Условия  за извършване  на теста : 
— използваната  процедура  на тестване  (например  полустатична  
или потокова , времето  от оплождането  до започването  на 
теста , зареждането  и т.н.); 
— фотопериод (и); 
— планиране  на теста  (например  брой  на тестовите  камери  и 
дублиращите  серии , брой  на ембрионите  в една  дублираща  
серия ); 
— метод  на подготовка  на основния  разтвор  и честотата  на 
сменяне  (трябва  да се посочени  разтворителя  и неговата  
концентрация , когато  се използват ); 
— номиналната  тествана  концентрация , измерените  стойности  
средствата  за изчисляване  на стойностите  и техните  
отклонения  в съдовете  за теста  и методът , чрез който  те са 
постигнати  и ако тестваното  вещество  се разтваря  във вода  
при концентрация  по-ниска  от тестваната , следва  да се 
представи  доказателство , че тези мерки  се отнасят  за конце­  
нтрацията  на тестваното  вещество  в разтвора ; 
— характеристика  разтворимост  във вода : рН, твърдост , 
температура , концентрация  на разтворен  кислород , нива  на 
остатъци  от хлор  (ако се измерени ), общо  органичен  
въглерод , разтворени  частици , соленост  на тестваната  среда  
(ако се измерва ) и всички  други  направени  измервания ; 
— качество  на водата  в съда  за тестване : рН, твърдост , 
температура  и концентрация  разтворен  кислород . 
2.3.4.  Резултати : 
— резултати  от предварителните  проучвания  за устойчивостта  
на тестваното  вещество ; 
— доказателство , че контролните  серии  отговарят  на 
стандартите  всички  допустими  критерии  за оцеляване  на 
тестваните  видове  (приложения  2 и 3); 
— данни  за смъртността /оцеляването  в стадиите  на ембриони  и 
ларви  и общата  смъртност /оцеляване ; 
— данни  за излюпването  и броя  на излюпените ; 
— данни  за дължината  (и теглото ); 
— разпространение  и описание  на морфологични  отклонение , 
ако има такива ; 
— разпространение  и описание  на въздействието  върху  
държанието , ако има такова ; 
— статистически  анализ  и обработка  на данните , 
— за тестове  анализирани  чрез ANOVA, най-ниската  конце­  
нтрация  с наблюдаван  ефект  (LOEC) като р = 0,05 и конце­  
нтрация  с ненаблюдавано  въздействие  (NOEC) за всяка  
оценена  реакция , включително  описание  на използваните  
статистически  процедури  и индикация  за размера  на възде­  
йствието , която  може  да се определи ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1172
 
— за тестове , анализирани  чрез регресионни  техники , LC/EC  X и 
интервалите  на сигурност , и диаграма  за използваните  
модели  за тяхното  изчисляване ; 
— обяснение  на всички  отклонения  от този метод  на тестване . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) Kristensen P. (1990). Evaluation of the Sensitivity of Short 
Term Fish Early Life Stage Tests in Relation to other FELS 
Test Methods. Final report to the Commission of the European Communities, 60 pp. June 1990.
 
(2) ASTM (1988). Standard Guide for Conducting Early Life- 
Stage Toxicity Tests with Fishes. American Society for Testing and Materials. E 1241-88. 26 pp.
 
(3) Brauhn J. L. and Schoettger R. A. (1975). Acquisition and 
Culture of Research Fish: Rainbow trout, Fathead minnows, 
Channel Catfish and Bluegills. p. 54, Ecological Research 
Series, EPA-660/3-75-011, Duluth, Minnesota.  
(4) Brungs W. A. and Jones B. R. (1977). Temperature Criteria for 
Freshwater Fish: Protocol and Procedures. p. 128, Ecological Research Series EPA-600/3-77-061, Duluth, Minnesota.
 
(5) Laale H. W. (1977). The Biology and Use of the Zebrafish 
(Brachydanio rerio) in Fisheries Research. A Literature 
Review. J. Biol. 10, pp. 121—173.  
(6) Legault R. (1958). A Technique for Controlling the Time of 
Daily Spawning and Collecting Eggs of the Zebrafish, Brac ­
hydanio rerio (Hamilton-Buchanan) Copeia, 4, pp. 328—330.  
(7) Dave G., Damgaard B., Grande M., Martelin J. E., Rosander 
B. and Viktor T. (1987). Ring Test of an Embryo-larval Toxicity Test with Zebrafish ( Brachydanio rerio ) Using 
Chromium and Zinc as Toxicants. Environmental Toxicology 
and Chemistry, 6, pp. 61—71.
 
(8) Birge J. W., Black J. A. and Westerman A. G. (1985). Short- 
term Fish and Amphibian Embryo-larval Tests for Determining the Effects of Toxicant Stress on Early Life Stages and Esti ­
mating Chronic Values for Single Compounds and Complex 
Effluents. Environmental Toxicology and Chemistry 4, pp. 
807—821.
 
(9) Van Leeuwen C. J., Espeldoorn A. and Mol F. (1986). Aquatic 
Toxicological Aspects of Dithiocarbamates and Related Compounds. III. Embryolarval Studies with Rainbow Trout (Salmo gairdneri ). J. Aquatic Toxicology, 9, pp. 129—145.
 
(10) Kirchen R. V. and W. R. West (1969). Teleostean Deve ­
lopment. Carolina Tips 32(4): 1-4. Carolina Biological 
Supply Company.  
(11) Kirchen R. V. and W. R. West (1976). The Japanese Medaka. 
Its care and Development. Carolina Biological Supply 
Company, North Carolina. 36 pp.  
(12) Dunnett C. W. (1955). A Multiple Comparisons Procedure for 
Comparing Several Treatments with Control. J. Amer. Statist. Assoc, 50, pp. 1096—1121.
 
(13) Dunnett C. W. (1964). New Tables for Multiple Comparisons 
with a Control. Biometrics, 20, pp. 482—491.  
(14) Mc Clave J. T., Sullivan J. H. and Pearson J.G. (1980). 
Statistical Analysis of Fish Chronic Toxicity Test Data. 
Proceedings of 4th Aquatic Toxicology Symposium, ASTM, 
Philadelphia.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1173
 
(15) Van Leeuwen C. J., Adema D. M. M. and Hermes J. (1990). 
Quantitative Structure-Activity Relationships for Fish Early 
Life Stage Toxicity. Aquatic Toxicology, 16, pp. 321—334.  
(16) Environment Canada. (1992). Toxicity Tests Using Early Life 
Stages of Salmonid Fish (Rainbow Trout, Coho Salmon or 
Atlantic Salmon). Biological Test Method Series. Report EPS 
1/RM/28, December 1992, 81 pp.  
(17) Dave G. and Xiu R. (1991). Toxicity of Mercury, Nickel, Lead 
and Cobalt to Embryos and Larvae of Zebrafish, Brachydanio 
rerio. Arch. Of Environmental Contamination and Toxicology, 
21, pp. 126—134.  
(18) Meyer A., Bierman C. H. and Orti G. (1993). The phylo ­
genetic position of the Zebrafish ( Danio rerio ), a model 
system in developmental biology — an invitation to the 
comperative methods. Proc. Royal Society of London, Series B, 252: pp. 231—236.
 
(19) Ghillebaert F., Chaillou C, Deschamps F. and Roubaud P. 
(1995). Toxic Effects, at Three pH Levels, of Two Reference Molecules on Common Carp Embryo. Ecotoxicology and Environmental Safety 32, pp. 19—28.
 
(20) US EPA, (1991). Guidelines for Culturing the Japanese 
Medaka,  Oryzias latipes . EPA report EPA/600/3-91/064, 
Dec. 1991, EPA, Duluth.  
(21) US EPA, (1991). Guidelines for Conducting Early Life Stage 
Toxicity Tests with Japanese Medaka, (Oryzias latipes). EPA 
report EPA/600/3-91/063, Dec. 1991, EPA, Duluth.  
(22) De Graeve G. M., Cooney J. D., McIntyre D. O., Poccocic T. L., 
Reichenbach N. G., Dean J. H. and Marcus M. D. (1991). Validity 
in the performance of the seven-day Fathead minnow ( Pimephales 
promelas ) larval survival and growth test: an intra- and interlabo ­
ratory study. Environ. Tox. Chem. 10, pp. 1189—1203.  
(23) Calow P. (1993). Handbook of Ecotoxicology, Blackwells, 
Oxford. Vol. 1, Chapter 10: Methods for spawning, culturing and conducting toxicity tests with Early Life stages of Estuarine and Marine fish.
 
(24) Balon E. K. (1985). Early life history of fishes: New develop ­
mental, ecological and evolutionary perspectives, Junk Publ., Dordrecht, 280 pp.
 
(25) Blaxter J. H. S. (1988). Pattern and variety in development, in: 
W. S. Hoar and D. J. Randall eds., Fish Physiology, Vol. XIA, 
Academic press, pp. 1—58.  
Таблица  1А 
Видове  риби , които  се препоръчват  за използване  при тестове  
СЛАДКОВОДНИ  
Oncorhynchus mykiss  
дъгова  пъстърва  (9) (16)  
Danio rerio  
риба  зебра (7) (17) (18)  
Cyprinus caprio  
шаран  (8) (19)  
Oryzias latipes  
японска  оризова  риба  (медака )(20) (21)  
Pimephales promelas  
рибка  бодливка  (8) (22)  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1174
 
Таблица  1Б 
Примери  за други  добре  документирани  видове , които  също  могат  да се използват  
СЛАДКОВОДНИ  СОЛЕНОВОДНИ  
Carassius auratus  
Златна  рибка  (8) Menidia peninsualae  
Крайбрежна  дребна  риба  (23) (24) (25)  
Lepomis macrochirus  
Риба  луна  (8) Clupea harengus  
Херинга  (24) (25)  
Gadus morhua  
Риба  треска  (24) (25)  
Cyprinodon variegatus  
Рибка  бодливка  (23) (24) (25)  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1175
 
Приложение  1 
РЪКОВОДСТВО  ЗА ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТОВЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  
ВЪРХУ  ЕМБРИОНИТЕ  И ИНДИВИДИТЕ  В СТАДИЯ  НА ХРАНЕНЕ  
ОТ ЖЪЛТЪЧНАТА  ТОРБИЧКА  НА РИБА  ЗЕБРА  (BRACHYDANIO 
RERIO ) 
ВЪВЕДЕНИЕ  
Рибата  зебра  произлиза  от Короманделския  бряг  на Индия , където  обитава  
бързотечащи  потоци . Това  е обикновена  аквариумна  риба  от семейство  
„Шарани “ и информация  за начините  на нейното  отглеждане  и развъждане  
може  да се намери  в съответните  книги  за тропическите  риби . Нейните  
биологически  особености  и използването  ѝ в проучвания  за рибарството  
се разглеждат  от Лаале  (1). 
Рибата  рядко  надвишава  45 mm дължина . Тялото  е цилиндрично  със 7—9 
тъмносини  хоризонтални  сребристи  ивици . Тези  ивици  достигат  до опашния  
плавник  и перките . Гърбът  е маслиненозелен . Мъжките  индивиди  са по- 
тънки  от женските . Женските  индивиди  са по-сребристи  и коремната  
област  е разширена , преди  всичко  заради  хвърлянето  на хайвера . 
Възрастните  риби  са способни  да устоят  на големи  колебания  в 
температурата , рН и твърдостта . Обаче , за да има здрави  риби , които  
снасят  яйца  от добро  качество , следва  да се осигурят  оптимални  условия . 
По време  на изхвърлянето  на хайвера  мъжките  преследват  и блъскат  
женските  и, тъй като яйцата  са изхвърлени , те се оплождат . Яйцата , 
които  са прозрачни  и не са лепкави , падат  на дъното , където  могат  да 
бъдат  изядени  от родителите . Изхвърлянето  на хайвера  се влияе  от свет­  
лината . Ако сутрешната  светлина  е подходяща , обикновено  рибите  
изхвърлят  хайвера  си в ранните  часове  на следващото  разсъмване . 
Женският  индивид  може  да произведе  групи  от по няколко  стотина  яйца  на 
седмични  интервали . 
УСЛОВИЯ  ЗА РИБИТЕ  РОДИТЕЛИ , ВЪЗПРОИЗВЕЖДАНЕ  И РАННИ  
СТАДИИ  НА СЪЩЕСТВУВАНЕ  
Избират  се подходящ  брой  здрави  риби  и се запазват  в подходяща  вода  (т.е. 
приложение  4) в продължение  на поне  две седмици  преди  очакваното  
изхвърляне  на хайвера . Групата  от риби  се храни  поне  веднъж  преди  
произвеждането  на групата  яйца , използвани  при теста . Гъстотата  на 
рибите  по време  на този период  не следва  да надвишава  1 g риба  на 
литър . Редовната  смяна  на водата  или използването  на почистващи  
системи  дава възможност  да се увеличи  гъстотата . Температурата  на 
аквариума  се поддържа  на нивото  от 25 + 2  o С. Рибата  се подлага  на 
различни  хранителни  режими , които  могат  да съдържат  например  
подходяща  суха  храна  от търговската  мрежа , живи  току -що уловени  
солнични  раци , Chronomids, Daphnia, бели  червеи  (Enchytraeids).  
По-долу  са описани  две процедури , които  на практика  водят  до достатъчен  
брой  здрави , оплодени  яйца , за да се извърши  теста : 
i) Осем  женски  и 16 мъжки  индивида  се поставят  в аквариум , съдържащ  50 
литра  вода  с разтвор , защитени  от директна  светлина  и се оставят  необе­  
зпокоявани  колкото  е възможно  повече , в продължение  на най-малко  48 
часа. Ваната  за събиране  на хайвера  се поставя  на дъното  на аквариума  
следобед  в деня , предшестващ  началото  на теста . Ваната  съдържа  
прегради  (плексиглас  или други  подходящи  материали ), с 5—7 cm 
височина  с 2—5 mm груба  мрежа , прикрепена  отгоре , както  и 
10—30 μm фина  мрежа  на дъното . Няколко  „дървета  от хайвер “, които  
се състоят  от разплетено  найлоново  въже , са прикрепени  към грубата  
мрежа  на рамката . След  като рибите  са били  оставени  12 часа на 
тъмнина , се пуска  слаба  светлина , която  предизвиква  изхвърлянето  на 
хайвера . От два до четири  часа след  изхвърлянето  на хайвера , ваната  се 
отстранява  и се събират  яйцата . Ваната  не позволява  рибите  да изядат  
яйцата  и в същото  време  дава възможност  за лесното  им събиране . 
Групата  от риби  следва  да е хвърляла  хайвер  поне  веднъж  преди  
изхвърлянето  на хайвера , от който  се използват  яйца  за тестване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1176
 
ii) От 5 до 10 мъжки  и женски  индивида  се настаняват  поотделно  поне  две 
седмици  преди  очакваното  изхвърляне  на хайвер . След  5—10 дни 
коремната  област  на женските  индивиди  се разширява  и техните  
генитални  папили  стават  видими . Мъжките  риби  нямат  папили . 
Изхвърлянето  на хайвера  става  в съответен  аквариум , оборудван  с 
лъжливо  дъно  с решетка  отгоре  (като е посочено  по-горе). Аквариумът  
се пълни  с вода  с разтвор , така че дълбочината  на водата  над решетката  
да е 5—10 cm. Един  женски  и два мъжки  индивида  се поставят  в този 
аквариум  един  ден преди  очакваното  изхвърляне  на хайвера . 
Температурата  на водата  се повишава  постепенно  до един  градус  над 
температурата  за аклиматизация . Светлината  се изгасва  и аквариумът  се 
оставя  колкото  е възможно  без външно  въздействие . На сутринта  се 
пуска  лека светлина , която  предизвиква  изхвърляне  на хайвера . След  
2—4 часа рибите  се отстраняват  и яйцата  се събират . Ако има нужда  
от по-голям  брой  яйца , отколкото  може  да се получи  от една  женска , 
може  паралелно  да се подготвят  достатъчен  брой  аквариуми  за хайвер . 
Чрез  записване  на постигнатата  репродуктивност  на женския  индивид  
преди  теста  (размера  на групата  и качеството ), тези женски , които  са с 
най-висока  репродуктивност q могат  да се изберат  за отглеждане . 
Яйцата  се пренасят  в съда  за изследване  чрез използване  на стъклени  тръби  
(вътрешен  диаметър  не по-малък  от 4 mm), снабдени  с еластично  мехурче  
за изсмукване . Количеството  вода , което  се пренася  заедно  с яйцата , е 
колкото  е възможно  по-малко . Яйцата  са по-тежки  от водата  и потъват  
извън  тръбата . Полагат  се грижи , за да се предпазят  яйцата  (ларвите ) от 
контакт  с въздуха . Следва  да се извърши  микроскопско  изследване  на 
пробите  от групата , за да се гарантира , че няма  неточности  в първите  
стадии  на развитие . Не се разрешава  дезинфекция  на яйцата . 
Скоростта  на смъртност  при яйцата  е най-висока  през първите  24 часа след  
оплождането . Смъртност  от 5—40 % е често  наблюдавана  през този период . 
Яйцата  се израждат  в резултат  от неуспешно  оплождане  или развитие . 
Качеството  на групата  яйца  зависи  от женския  индивид , тъй като някои  
женски  постоянно  произвеждат  яйца  с добро  качество , а други  никога  не 
произвеждат  доброкачествени  яйца . Скоростта  на развитие  и на излюпване  
също  зависи  от различните  групи . Обикновено  над 90 % от успешно  
оплодените  яйца  и ларвите  в жълтъчната  торбичка  оцеляват . При 25  o С 
яйцата  се излюпват  3—5 дни след  оплождането  и жълтъчната  торбичка  се 
абсорбира  приблизително  13 дни след  оплождането . 
Развитието  на ембриона  е добре  описано  от Хизаока  и Батъл  (2). Благ­  
одарение  на прозрачността  на яйцата  и ларвите  след  излюпването , може  
да се следи  развитието  на рибата  и да се наблюдава  наличието  на 
дефекти . Приблизително  четири  часа след  изхвърлянето  на хайвера , 
неоплодените  яйца  могат  да се различат  от оплодените  (3). При това 
изследване  яйцата  и ларвите  се поставят  в съдове  за тестване  с малък  
обем  и се изучават  под микроскоп . 
Условията  за извършване  на теста , които  се прилагат  в ранния  стадий , са 
изброени  в приложение  2. Оптималните  стойности  за рН и за твърдост  на 
водата , съдържаща  разтвора , са 7, 8 и съответно  250 mg СаСО  3 /l. 
ИЗЧИСЛЕНИЯ  И СТАТИСТИКА  
Предлага  се двустепенен  подход . Първо  се анализират  статистически  
данните  за смъртността , анормалното  развитие  и времето  на изхвърляне  
на хайвера . След  това за тези концентрации , при които  не са били  
определен  вредни  ефекти  по никой  от тези параметри , статистически  се 
изчислява  дължината  на тялото . Този  подход  се препоръчва , тъй като токс­  
икантите  могат  селективно  да убият  по-малките  риби , да забавят  времето  за 
изхвърляне  на хайвера  и да предизвикат  основни  дефекти , което  води  до 
измервания  на наклонената  дължина . Освен  това ще е налице  приблиз­  
ително  същият  брой  риби , който  трябва  да бъде  измерен  за една  
обработка  при гарантиране  на валидността  на тестваното  вещество . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1177
 
LC 50 И ЕС 50 ФОРМУЛИ  
Процентът  на оцелелите  яйца  и ларви  се изчислява  и се коригира  за 
смъртността  при контролите  съгласно  формулата  на Абот  (4): 
P ¼ 100 Ä C Ä P 0 
C Ü 100 Í Î  
където , 
Ρ = коригиран  процент  оцелели  
Р' = процент  на оцелели , наблюдавани  в тестваната  концентрация  
С = процент  оцелели  в контролната  серия  
Ако е възможно , LC  50 се определя  чрез подходящ  метод  в края  на теста . 
Ако е желателно  включването  на морфологичните  аномалии  в статист­  
ическите  данни  за ЕС 50 , могат  да се намерят  насоки  при Стефан  (5). 
ОЦЕНКА  НА LOEC И NOEC  
Една  от целите  на изследването  на яйцата  и индивидите  в стадия  
на изхранване  от жълтъчната  торбичка , е да се направи  сравнение  
на нулевите  концентрации  с контролата , т.е. да определи  LOEC. 
Следователно  могат  да се използват  процедури  за многократно  сравняване  
(6) (7) (8) (9) (10).  
ПОЗ OBABАНИЯ  
(1) Laale H. W. (1977). The Biology and Use of the Zebrafish ( Brachydanio 
rerio ) in Fisheries Research. A Literature Review. J. Fish Biol. 10, pp. 
121—173.  
(2) Hisaoka K. K. and Battle H. I. (1958). The Normal Development Stages of 
the Zebrafish  Brachydanio rerio  (Hamilton-Buchanan) J. Morph., 102, 311 
pp. 
(3) Nagel R. (1986). Untersuchungen zur Eiproduktion beim Zebrabärbling  
(Brachydanio rerio  Hamilton-Buchanan). Journal of Applied Ichthyology, 
2, pp. 173—181.  
(4) Finney D. J. (1971). Probit Analysis, 3rd ed., Cambridge University Press, 
Great Britain, pp. 1—333.  
(5) Stephan C. E. (1982). Increasing the Usefulness of Acute Toxicity Tests. 
Aquatic Toxicology and Hazard Assessment: Fifth Conference, ASTM STP 766, J. G. Pearson, R. B. Foster and W. E. Bishop, Eds., American Society for Testing and Materials, pp. 69—81.
 
(6) Dunnett C. W. (1955). A Multiple Comparisons Procedure for Comparing 
Several Treatments with a Control. J. Amer. Statist. Assoc, 50, 
pp. 1096—1121.  
(7) Dunnett C. W. (1964). New Tables for Multiple Comparisons with a 
Control. Biometrics, 20, pp. 482—491.  
(8) Williams D. A. (1971). A Test for Differences Between Treatment Means 
when Several Dose Levels are Compared with a Zero Dose Control. 
Biometrics, 27, pp. 103—117.  
(9) Williams D. A. (1972). The Comparison of Several Dose Levels with a 
Zero Dose Control. Biometrics 28, pp. 519—531.  
(10) Sokal R. R. and Rohlf F. J. (1981). Biometry, the Principles and Practice of 
Statistics in Biological Research, W. H. Freeman and Co., San Francisco.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1178
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1179
 ▼B 
Приложение  2 
УСЛОВИЯ  ЗА ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТА , ПРОДЪЛЖИТЕЛНОСТ  И КРИТЕРИИ  ЗА СПОСОБНОСТТА  ЗА ОЦЕЛЯВАНЕ  ПРИ  ПРЕПОРЪЧАНИТЕ  ВИДОВЕ  
ВИДОВЕ  Температура  
(°С) Соленост  
(0/00) Период  на 
излагане  на 
светлина  
(часове ) Продължителност  на периода  
(дни) 
Типична  продължителност  на теста  Оцеляване  на контролите  
(минимум  %) 
ембриони  торбичка  успешно  
изхвърляне  на 
хайвер  след  
изхвърлянето  
на хайвера  
СЛАДКОВОДНИ  
Brachydanio rerio  
риба  зебра  DANIORERIO  25±1 — 12–16 3–5 8–10 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 5 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(8—10 дни) 80 90  
ONCORHYNCHUS MYKISS  
дъгова  пъстърва  10±1 (  1 ) 
12±1 (  2 ) — 0 (  а ) 30–35 25–30 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 20 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(50—55 дни) 66 70  
CYPRINUS CAPRIO  
шаран  21–25 — 12–16 5 >4 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 4 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(8—9 дни) 80 75  
ORYZIAS LATIPES  
японска  оризова  риба  24±1 (  1 ) 
23±1 (  2 ) — 12–16 8–11 4–8 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 5 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(13—16 дни) 80 80  
PIMEPHALES ROMELAS  
рибка  бодливка  25±2 — 16 4–5 5 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 4 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(8—9 дни) 60 70  
( 1 ) За ембриони . 
( 2 ) За ларви . 
( а ) Тъмнина  за ембриони  и ларви  до една  седмица  след  изхвърлянето  на хайвера , с изключение  на времето , когато  се наблюдават . По-късно  по време  на теста  намалена  светлина .
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1180
 ▼B 
Приложение  3 
Условия  за извършване  на теста , продължителност  и критерии  за способността  за оцеляване  при препоръчаните  видове  
Видове  Температура  
( o С) Соленост  (0/00) Период  на 
излагане  на 
светлина  
(часове ) Продължителност  на периода  
(дни) 
Типична  продължителност  на теста  Оцеляване  на контролите  
(минимум  %) 
ембриони  торбичка  успешно  
изхвърляне  на 
хайвер  след  
изхвърлянето  
на хайвера  
СЛАДКОВОДНИ  
Carassius auratus  
златна  рибка  24 ± 1 — — 3—4 >4 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 4 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(7 дни) — 80  
Lepomis macrochirus  
риба  луна  21 ± 1 — 16 3 >4 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 4 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(7 дни) — 75 
СОЛЕНОВОДНИ  
Menidia peninsualae  
крайбрежна  дребна  риба  15—22 12 1,5 10 Колкото  е възможно  по скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  гаструла ) 
до 5 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(6—7 дни) 80 60  
Clupea harengus  
херинга  10±1 8—15 20—25 3—5 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 3 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(23—27 дни) 60 80  
Gadus morhua  
риба  треска  5 ± 1 5—30 12 14—16 3—5 Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 3 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(18 дни) 60 80  
Cyprinodon variegates  
рибка  бодливка  25 ± 1 15—30 12 — — Колкото  е възможно  по-скоро  след  
оплождането  (ранен  стадий  на гаструла ) 
до 4/7 дни след  изхвърлянето  на хайвера  
(28 дни) >75 80
Допъл hение  4 
НЯКОИ  ХИМИЧНИ  ХАРАКТЕРИСТИКИ  НА ДОПУСТИМ  РАЗТВОР  
ВвВ ВОДАТА  
ВЕЩЕСТВО  КОНЦЕНТРАЦИИ  
ПРАХОВИ  ЧАСТИЦИ  < 20 mg/1 
ОБЩ  ОРГАНИЧЕН  ВЪГЛЕРОД  < 2 mg/1 
НЕЙОНИЗИРАН  АМОНЯК  < 1 μg/l 
ОСТАТЪЦИ  ОТ ХЛОР  < 10 μg/l 
ОБЩИ  ОРГАНОФОСФОРНИ  ПЕСТИЦИДИ  < 50 ng/1 
ОБЩИ  ОРГАНОХЛОРНИ  ПЕСТИЦИДИ  ПЛЮС  
ПОЛИХЛОРЕН  БИФЕНИЛ  < 50 ng/1 
ОБЩ  ОРГАНИЧЕН  ХЛОРИН  < 25 ng/1  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1181
 
В.16. МЕДОНОСНА  ПЧЕЛА  — ТЕСТ  ЗА ОСТРА  ОРАЛНА  
ТОКСИЧНОСТ  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изследване  на острата  токсичност  е точно  копие  
на ОИСР  TG 213 (1998).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  тест за токсичност  при медоносните  пчели -работнички  е 
лабораторен  метод , планиран  с цел да се оцени  оралната  остра  
токсичност  на продуктите  за защита  на растенията  и други  
химикали . 
При оценката  и изчисляването  на токсичните  характеристики  на 
веществата  може  да се изисква  определяне  на острата  орална  токс­  
ичност  при медоносните  пчели , т.е. когато  е възможно  излагане  на 
пчелите  на даден  химикал . Тестът  за острата  орална  токсичност  при 
пчелите  се извършва , за да се определи  присъщата  токсичност  на 
пестицидите  и други  химикали  по отношение  на пчелите . 
Резултатите  от този тест следва  да се използват  за определяне  необ­  
ходимостта  от по-нататъшна  оценка . По-специално  този метод  
може  да се използва  при програмите  за оценка  на риска  от 
пестициди  при пчелите , основана  на последваща  прогресия  от 
лабораторни  тестове  за токсичност  до експерименти  в полуполеви  
и полеви  условия  (1). Пестицидите  могат  да се изследват  като 
активни  вещества  или като образувани  продукти . 
Използва  се стандарт  за токсичност , за да се провери  чувствит­  
елността  на пчелите  и прецизността  на процедурата  по 
извършване  на теста . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Остра  орална  токсичност : представлява  вредните  ефекти , които  
се появяват  при максимална  продължителност  от 96 часа (h) на 
орално  приемане  на отделна  доза от тестваното  вещество . 
Доза : е сборът  от консумираното  тествано  вещество . Дозата  се 
изразява  като съотношение  на масата  (μg) на тестваното  
вещество  към тестваното  животно  (μg/пчел a). Истинската  доза 
за всяка  пчела  поотделно  не може  да се изчисли , тъй като 
пчелите  се хранят  колективно , но може  да се изчисли  една  
средна  доза (общото  консумирано  тествано  вещество /броя  на 
тестваните  пчели  в една  клетка ). 
LD 50 (средната  летална  доза ) орална : това е статистически  
получената  единична  доза от веществото , която  може  да 
причини  смърт  при 50 % от животните , когато  се приема  през 
устата . Стойността  на LD  50 се изразява  в μg от тестваното  
вещество  на пчела . За пестицидите  тестваното  вещество  може  
да е или активно  вещество , или образуван  продукт , съдържащ  
едно  или повече  от едно  активни  вещества . 
Смъртност : животното  се записва  като мъртво , когато  е 
напълно  неподвижно . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОД  НА ТЕСТВАНЕ  
Възрастните  медоносни  пчели  работнички  (Apis mellifera)  се 
излагат  на серия  дози  от тестваното  вещество , разпръснато  в 
захаросан  разтвор . След  това пчелите  се подлагат  на същия  
хранителен  режим , който  не включва  тестваното  вещество . 
Смъртността  се записва  всеки  ден по време  на период  от 48 
часа и се сравнява  с контролните  стойности . Ако степента  на 
смъртност  се увеличи  за период  от 24 до 48 часа, докато  
контролната  смъртност  остава  на приемливо  ниво , т.е. < 10 %, 
е подходящо  да се удължи  продължителността  на теста  до 
максимум  96 часа. Резултатите  се анализират , за да се изчисли  
LD 50 на двадесет  и четвъртия  и на четиридесет  и осмия  час, а в 
случаи  на продължително  изследване , на седемдесети  втория  и 
на деветдесет  и шестия  час. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1182
 
1.4. ВАЛИДНОСТ  НА ТЕСТА  
За да бъде  тестът  валиден , прилагат  се следните  условия : 
— средна  смъртност  за общия  брой  контроли  не трябва  да 
надвишава  10 % към края  на теста ; 
— LD  50 на токсичните  стандарти  отговаря  на специален  обхват . 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТВАНЕ  
1.5.1.  Избор  на пчели  
Използват  се младите  възрастни  пчели  работници  от един  и същ 
род, т.е. пчели  с една  и съща  възраст , начин  на хранене , т.н. 
Пчелите  се взимат  от подходящо  хранени , здрави  и, доколкото  е 
възможно , неболедували  колонии  с пчела  царица , чието  минало  
и физиологически  статус  са добре  познати . Те могат  да се 
съберат  сутринта  или вечерта  преди  теста  и да се държат  при 
условията  на тестване  до следващия  ден. Подходящи  са пчели , 
събрани  от пита  без пилило . Събирането  в ранна  пролет  или 
късна  есен се избягва , тъй като пчелите  изменят  физиологията  
си през това време . Ако тестовете  трябва  да се проведат  през 
ранна  пролет  или късна  есен, пчелите  могат  да се сложат  в 
инкубатор  и да се развъждат  за една  седмица  с „пчелен  хляб “ 
(тичинков  прашец , събран  от медената  пита ) и захаросан  
разтвор . Пчелите , които  са третирани  с химични  вещества  като 
антибиотици , антивароа  продукти  и т.н., не се използват  при 
тест за токсичност  в продължение  на четири  седмици  след  
края  на последното  третиране . 
1.5.2.  Условия  на настаняване  и хранене  
Използват  се клетки , които  се почистват  лесно  и се проветряват  
добре . Могат  да се използват  всички  подходящи  материали , т.е. 
неръждаема  стомана , телена  решетка , пластмасови  и дървени  
клетки  за еднократна  употреба , т.н. Предпочитат  се групи  от 
10 пчели  в клетка . Размерът  на клетките  за теста  следва  да 
съответства  на броя  на пчелите , т.е. да осигурява  достатъчно  
пространство . 
Пчелите  се държат  в тъмнина  в експерименталната  стая при 
температура  от 25 ± 2  o С. По време  на теста  следва  да се 
записва  относителната  влажност , която  нормално  е около  
50—70 %. Процедурите  по задържането , включително  
обработката  и наблюденията  могат  да се провеждат  при 
(дневна ) светлина . За храна  се използва  захаросан  разтвор  във 
вода  с крайна  концентрация  от 500 g/1 (50 % w/v). По желание  
храната  се дава след  даването  на тествана  доза. Системата  на 
хранене  позволява  записване  на приеманата  храна  за всяка  
клетка  (вж. точка  1.6.3.1). Може  да се използва  стъклена  тръба  
(приблизително  50 mm дълга  и 10 mm широка  с тесен  отвор  от 
едната  страна  около  2 mm диаметър ). 
1.5.3.  Подготовка  на пчелите  
Събраните  пчели  се разпределят  произволно  в клетките  за теста , 
разположени  произволно  в помещението , където  се извършва  
тестът . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1183
 
Пчелите  могат  да се оставят  гладни  до два часа преди  началото  
на теста . Препоръчва  се на пчелите  да не дава храна  преди  
обработването , за да може  пчелите  да са в еднакво  положение  
относно  съдържанието  в червата  им при започването  на 
теста .Умиращите  пчели  се изхвърлят  и се заместват  със здрави  
преди  началото  на теста . 
1.5.4.  Подготовка  на дозите  
Тестваното  вещество  е водна  смес  и може  да бъде  разсеяно  
пряко  в 50 % захаросан  разтвор . За техническите  продукти  и 
вещества  с ниска  водна  разтворимост , могат  да се използват  
разтворители  като например  органичен  разтвор , емулгатор  и 
диспергиращо  вещество  с ниска  токсичност  към пчелите (т.е. 
ацетон , диметилформамид , диметилсулфоксид ). Конце­  
нтрациятта  на разтворителя  зависи  от разтворимостта  на 
тестваното  вещество  и следва  да е еднаква  при всички  
тествани  концентрации . Обаче  концентрацията  на разтворителя  
от 1 % е в повечето  случаи  подходяща  и не следва  да бъде  
надвишавана . 
Следва  да се приготви  подходящ  контролен  разтвор , т.е. където  
един  разтвор  или разтворител  се използват  за разтваряне  на 
тестваното  вещество , използват  се и две отделни  контролни  
групи : разтвор  във вода  и захаросан  разтвор  с разтворител /­ 
носител  на концентрацията  при дозиране  на разтворите . 
1.6. ПРОЦЕДУРА  
1.6.1.  Тествани  и контролни  групи  
Броят  на тестваните  дози  и дублиращите  дози  следва  да 
отговаря  на статистическите  изисквания  за определяне  на LD  50 
c 95 % граници  на сигурност  Обикновено  за теста  се изискват  
пет дози  в геометрична  серия  с коефициент , който  не превишава  
2,2 и покрива  стойността  за LD  50 . Обаче  факторът  на разт­  
ворителя  броят  на концентрациите  за дозиране  трябва  да се 
определи  спрямо  наклона  на токсичната  крива  (доза в 
сравнение  със смъртност ) и като се вземе  предвид  статист­  
ическия  метод , който  е избран  за анализиране  на резултатите . 
Сведенията , събрани  от тестовете , позволяват  избор  на 
подходящи  концентрации  на дозиране . 
Минимум  три дублиращи  тестови  групи , всяка  с 10 пчели , се 
дозират  с всяка  от тестваните  концентрации . Минимум  три 
контролни  тестови  групи , всяка  с 10 пчели , се добавят  към 
сериите  за тестване . Контролните  групи  следва  също  да бъдат  
включени  във връзка  с използването  на разтворител /носител  (вж. 
точка  1.5.4).  
1.6.2.  Стандарти  за токсичност  
Стандартът  за токсичност  се включва  в сериите  за тестове . Поне  
три дози  се избират , за да се покрие  очакваната  стойност  на 
LD 50 . C всяка  доза се използват  минимум  три дублиращи  
клетки , всяка  съдържаща  10 пчели . Предпочитаният  токсичен  
стандарт  е диметоат , за който  докладваната  орална  LC  50 - 24 
часа е в обхвата  от 0,10—0,35 μg активно  вещество /пчела  (2). 
Обаче  други  токсични  стандарти  биха  били  приемливи , когато  
достатъчни  данни  могат  да бъдат  предоставени , за да се провери  
очаквания  ефект  от дозата  (например  паратион ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1184
 
1.6.3.  Експозиция  
1.6.3.1.  Приемане  на дозата  
Всяка  тестова  група  от пчели  трябва  да има 100—200 μg от 
50 % захаросан  разтвор  във вода , съдържащ  тестваното  
вещество  при подходящо  концентрация . Големият  обем  
изисква  за всички  продукти  с ниска  разтворимост , ниска  токс­  
ичност  или ниска  концентрация  на образуването , тъй като 
захаросания  разтвор  трябва  да бъде  използван . Трябва  да се 
наблюдава  приетата  от всяка  група  обработена  храна . Веднъж  
консумирана  (обикновено  за 3—4 часа), храната  се отстранява  
от клетката  и се замества  с друга , която  съдържа  само  захаросан  
разтвор . След  това получават  захаросаните  разтвори  по желание . 
За някои  съединения  при по-висока  концентрация  отхвърлянето  
на тестваната  доза може  да има за резултат  по-малко  или липса  
на консумирана  храна . След  максимум  6 часа неконсумираната  
третирана  храна  се замества  само  със захаросан  разтвор . Сумата  
на третираната  консумирана  храна  се изчислява  (например  
измерване  на обема /количество  на оставащата  третирана  храна ). 
1.6.3.2.  Продължителност  
Продължителността  на теста  за предпочитане  е 48 часа след  
като тестваният  разтвор  е заменен  само  от захаросан  разтвор . 
Ако смъртността  продължи  да се увеличава  с повече  от 10 % 
след  първите  24 часа, продължителността  на теста  следва  да се 
увеличи  на максимума  от 96 часа, при условие  че контролната  
смъртност  не превиши  10 %.  
1.6.4.  Наблюдения  
Смъртността  се записва  на четвъртия  час след  началото  на теста  
и след  това на 24 и 48 часа (т.е. след  даване  на дозата ). Ако се 
налага  удължен  период  за наблюдения , се правят  по-нататъшни  
оценки  за интервал  от 24 часа, до максимум  от 96 часа, при 
условие  че контролната  смъртност  не превиши  10 %.  
Количеството  консумирана  храна  на група  се изчислява . 
Сравняването  на количеството  консумация  на третираната  и 
нетретирана  храна  за дадени  6 часа може  да предостави  
информация  за вкуса  на третираната  храна . 
Всяко  наблюдавано  въздействие  на анормално  държание  по 
време  на теста  се записва . 
1.6.5.  Тест  с ограничение  
В някои  случаи  (например , когато  се очаква  тестваното  
вещество  да е с ниска  токсичност ) се извършват  ограничени  
тестове , с използване  на 100 μg активно  вещество /пчела  с цел 
да се демонстрира , че стойността  на LC  50 е по-висока  от тази 
стойност . Същата  процедура  се използва , като се включат  три 
дублиращи  тестови  групи  за тествана  доза, съответните  
контролни  групи , оценка  на количеството  консумирана  храна , 
подложена  на обработване  и използването  на токсичния  
стандарт . Ако се появи  смъртност , следва  да се извърши  
цялостно  проучване . Ако се наблюдава  сублетално  въздействие , 
то се записва  (вж. точка  1.6.4).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1185
 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. ДАННИ  
Данните  се сумират  в таблична  форма , показвайки  за всяка  
третирана  група , както  и за контролните  и за групите  със 
стандартна  токсичност , броя  на използваните  пчели , 
смъртността  за всеки  наблюдаван  период  от време  и броя  на 
пчелите  с анормално  поведение . Анализирайте  данните  за 
смъртността  чрез подходящи  статистически  методи  (например  
точен  анализ , изменяща  се средна  стойност  и вероятност  за 
биномно  разпределение  (3) (4)). Изобразете  графично  кривите , 
които  отговарят  на дозите  по всяко  препоръчано  време  за набл­  
юдение  и изчислете  наклона  на кривите  и медианата  на летални  
дози  LD  50 c 95 % граници  на сигурност . Коригирането  на 
контролната  смъртност  може  да се направи  като се използва  
поправката  на Абот  (4) (5). Когато  третираната  храна  не е 
изцяло  консумирана , се определя  дозата  консумирано  тествано  
вещество  на група . LD  50 се изразява  в μg от тестваното  
вещество  за пчела . 
2.2. ОТЧИТАНЕ  НА ТЕСТА  
Отчетът  за теста  трябва  да съдържа  следната  информация : 
2.2.1.  Тествано  вещество : 
— физична  природа  и съответните  физико -химични  свойства  
(устойчивост  във водата , парно  налягане ); 
— данни  за химична  определеност  включително  структурната  
формула , чистота  (т.е. за пестицидите  определяне  и конце­  
нтрация  на активното  вещество (а). 
2.2.2.  Тествани  видове : 
— научно  наименование , род, приблизителна  възраст  (в 
седмици ), метод  на събиране , дата на събиране , 
— информация  за използваните  колонии , от които  се събират  
пчелите  за теста , включително  здравословно  състояние , 
болести  при възрастни  индивиди , всякаква  предварителна  
обработка  и т.н. 
2.2.3.  Условия  на теста : 
— температура  и съответната  влажност  на стаята  за 
експеримента , 
— условия  на настаняване  включително  вид, размер  и материал , 
от които  са направени  клетките , 
— методи  за подготовка  на основния  и тествания  разтвор  (разт­  
ворителят  и неговата  концентрация  трябва  да са дадени , 
когато  се използват ); 
— методи  за подготовка  на основните  разтвори  и честота  на 
подновяване  (разтворителят  и неговата  концентрация  
трябва  да са дадени , когато  се използват ); 
— проектиране  на метода , т.е. брой  и използвани  тествани  
концентрации , брой  на контролите ; за всяка  тествана  конце­  
нтрация  и контрола , брой  на дублиращите  клетки  и брой  на 
пчелите  в клетка ; 
— дата на извършване  на теста . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1186
 
2.2.4.  Резултати : 
— резултати  от предварителното  изследване  за откриване  на 
обхвата , ако е извършвано ; 
— груби  данни : смъртност  за всяка  тествана  доза за всяко  набл­  
юдавано  време , 
— диаграма  на кривите  за реакция  спрямо  дозите  в края  на 
теста ; 
— стойности  на LD  50 c 95 % граници  на сигурност  за всяко  
време , препоръчано  за наблюдение , за тестваното  вещество  
и токсичния  стандарт ; 
— статистически  процедури , използвани  за определяне  на LD  50 ; 
— смъртност  при контролите ; 
— други  биологически  ефекти , наблюдавани  или измерени  т.е. 
анормално  поведение  на пчелите  (включително  изхвърляне  
на тестваната  доза), количеството  консумирана  храна  при 
третираните  и нетретирани  групи ; 
— всички  отклонения  от описаната  процедура  на теста  и всяка  
друга , отнасяща  се до това информация . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) EPPO/Council of Europe (1993). Decision-Making Scheme for 
the Environmental Risk Assessment of Plant Protection Products ó Honeybees. EPPO Bulletin, Vol. 23, N.1, pp. 
151—165. March 1993.
 
(2) Gough, H. J., McIndoe, E.C., Lewis, G.B. (1994). The use of 
dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity tests on honeybees ( Apis mellifera  L.) 1981—1992. Journal of 
Apicultural Research, 22, pp. 119—125.
 
(3) Litchfield, J.T. and Wilcoxon, F. (1949). A simplified method 
of evaluating dose-effect experiments. Jour. Pharmacol. and Exper. Ther., 96, pp. 99—113.
 
(4) Finney, D. J. (1971). Probit Analysis. 3rd ed., Cambridge, 
London and New York.  
(5) Abbott, W. S. (1925). A method for computing the effectiveness 
of an insecticide. Jour. Econ. Entomol., 18, pp. 265—267.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1187
 
В.17. МЕДОНОСНА  ПЧЕЛА  — ТЕСТ  ЗА ОСТРА  КОНТАКТНА  
ТОКСИЧНОСТ  
1. МЕТОД  
Този  метод  за изследване  на острата  токсичност  е точно  копие  
на ОИСР  TG 214 (1998).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  текст  за токсичност  при медоносните  пчели  работнички  е 
лабораторен  метод , създаден  за оценяване  на острата  контактна  
токсичност  на продукти  за растителна  защита  и други  химикали . 
При оценката  и оценяването  на токсичните  характеристики  на 
веществата , може  да се изисква  определяне  на острата  контактна  
токсичност  при медоносните  пчели , т.е. когато  е възможно  
излагане  на пчелите  на даден  химикал . Тестът  за острата  
контактна  токсичност  се извършва  за да се определи  
присъщата  токсичност  на пестицидите  и други  химикали  за 
пчелите . Резултатите  от този тест се използват  за да се 
определи  нуждата  от по-нататъшна  оценка . По-специално  този 
метод  може  да се използва  програмите  за оценка  на риска  от 
пестициди  при пчелите , основани  на последваща  прогресия  от 
лабораторни  тестове  за токсичност  до експерименти  в 
полуполеви  и полеви  условия  (1). Пестицидите  могат  да се 
изследват  като активни  вещества  или като образувани  продукти . 
Токсичният  стандарт  се използва  за да се провери  чувствит­  
елността  на пчелите  и прецизността  на процедурата  по 
извършване  на теста . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Острата  орална  токсичност : представлява  вредните  ефекти , 
които  се появяват  за минимален  период  от 96 часа (h) при 
локално  прилагане  на отделна  доза от веществото . 
Доза : е сбора  от прилаганото  тествано  вещество . Дозата  се 
изразява  като масата  на тестваното  вещество  към тестваното  
животно  (μg/пчела ). 
LD 50 (средната  летална  доза ) контактна : това е статистически  
извлечената  единична  доза от веществото , която  може  да 
причини  смърт  при 50 % от животните , когато  се приема  чрез 
контакт . LD  50 стойност  се изразява  в μg от тестваното  вещество  
на пчела . За пестицидите  тестваното  вещество  може  да е или 
активно  вещество  или образуван  продукт , съдържащ  едно  или 
повече  от едно  активни  вещества . 
Смъртност : животното  се записва  като мъртво , когато  е 
напълно  неподвижно . 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОД  НА ТЕСТВАНЕ  
Възрастните  медоносни  пчели  работнички  (Apis mellifera)  се 
излагат  на серия  дози  от тестваното  вещество , разтворено  в 
подходящ  носител  чрез директно  прилагане  върху  гръдния  
кош (капчици ). Тестът  продължава  48 часа. Ако нивото  на 
смъртност  се увеличи  за период  от 24 до 48 часа, докато  
контролната  смътност  остава  на приемливо  ниво , т.е. ≤ 10 %, 
подходящо  е да се удължи  продължителността  на теста  до 
максимум  96 часа. Смъртността  се записва  всеки  ден и се 
сравнява  с контролните  стойности  Резултатите  се анализират  с 
цел да се изчисли  LD  50 от 24 часа и 48 часа, а в случаи  на 
продължено  изследване  на 72 часа и 96 часа. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1188
 
1.4. ВАЛИДНОСТ  НА ТЕСТА  
За да бъде  тестът  валиден , се прилагат  следните  условия : 
— средната  смъртност  за общия  брой  контроли  не трябва  да 
надвишава  10 % в края  на теста ; 
— LD  50 на токсичните  стандарти  отговаря  на специалния  обхват . 
1.5. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТВАНЕ  
1.5.1.  Избор  на пчели  
Използват  се млади  възрастни  пчели  работници , т.е. пчели  с една  и 
съща  възраст , начин  на хранене , род и т.н. Пчелите  се взимат  от 
подходящо  хранени , здрави  и, доколкото  е възможно , небо­  
ледували  колонии  с пчела  царица , чието  минало  и физиологически  
статус  са добре  познати . Те могат  да се съберат  сутринта  или 
вечерта  преди  теста  и да се държат  при условията  на тестване  до 
следващия  ден. Подходящи  са пчели  събрани  от пита  без 
пипило .Събирането  в ранна  пролет  или късна  есен се избягва , 
тъй като пчелите  изменят  физиологията  си през това време . Ако 
тестовете  трябва  да се проведат  през ранна  пролет  или късна  есен, 
пчелите  могат  да се сложат  в инкубатор  и да се развъждат  за една  
седмица  с „пчелен  хляб “ (тичинков  прашец , събран  от медената  
пита ) и захаросан  разтвор . Пчелите , които  са третирани  с химични  
вещества  като антибиотици , антивароа  продукти  и т.н., не се 
използват  за тест за токсичност  в продължение  на четири  
седмици  от края  на последното  третиране . 
1.5.2.  Условия  на настаняване  и хранене  
Използват  се клетки , които  се почистват  лесно  и се проветряват  
добре . Могат  да се използват  всички  подходящи  материали , т.е. 
неръждаема  стомана , телена  решетка , пластмасови  и дървени  
клетки  за еднократна  употреба , т.н. Размерът  на клетките  за 
теста  следва  да съответства  на броя  на пчелите , т.е. да 
осигурява  достатъчно  пространство . Предпочитат  се групи  от 
10 пчели  в клетка . 
Пчелите  се държат  на тъмно  в експерименталното  помещение  
при температура  от 25 ± 2  o С. По време  на теста  следва  да се 
записва  относителната  влажност , която  нормално  е около  
50—70 %. Процедурите  по провеждането , включително  
обработката  и наблюденията , могат  да се провеждат  при 
(дневна ) светлина . За храна  се използва  захаросан  разтвор  във 
вода  с крайна  концентрация  от 500 g/l (50 % w/v) и след  
тестваната  доза храната  се дава по преценка , като се използва  
хранилка  за пчели . Това  може  да е стъклена  тръба  (приблиз­  
ително  50 mm дълга  и 10 mm широка  с тесен  отвор  от едната  
страна  с размер  около  2 mm диаметър ). 
1.5.3.  Подготовка  на пчелите  
Събраните  пчели  произволно  се упояват  с въглероден  диоксид  
или амоняк  за да се приложи  тестваното  вещество . Колич­  
еството  използвано  упойващо  вещество  и времето  на излагане  
са минимални . Умиращите  пчели  се изхвърлят  и се заместват  
със здрави  преди  започването  на теста . 
1.5.4.  Подготовка  на дозите  
Когато  тестваното  вещество  се прилага  като разтвор  на 
носителя , т.е. органичен  разтвор  или воден  разтвор  с мокрещо  
вещество . За органичен  разтворител  се предпочита  ацетон , но 
могат  да се използват  и други  органични  разтворители  с ниска  
токсичност  (например  диметилформамид , диметилсулфоксид ). 
За продукти , получени  при разтваряне  във вода  и за 
високополярни  органични  вещества , които  не се разтварят  в 
органични  разтвори  преносители , разтварянето  може  да се 
улесни , ако се приготви  в слаб  разтвор  на промишлено  
мокрещо  вещество  (например  Agral, Cittowett, Lubrol, Triton, 
Tween).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1189
 
Следва  да се приготви  подходящ  контролен  разтвор , т.е. където  
един  разтвор  или разтворител  се използват  за разтваряне  на 
тестваното  вещество , се използват  и две отделни  контролни  
групи : една  третирана  с вода  и една  с разтвор /дисперсант . 
1.6. ПРОЦЕДУРА  
1.6.1.  Тествани  и контролни  групи  
Броят  на тестваните  дози  и броят  на дублиращите  дози  следва  
да отговарят  на статистическите  изисквания  за определяне  на 
LD 50 c 95 % граници  на сигурност . Обикновено  за теста  се 
изискват  пет дози  в геометрична  прогресия  с коефициент , 
който  не превишава  2,2 и покрива  стойността  за LD  50 . Обаче  
броят  на дозите  трябва  да бъде  определен  по отношение  на 
наклона  на токсичната  крива  (доза спрямо  смъртност ) и като 
се взимат  под внимание  статистическия  метод , който  е избран  
за анализиране  на резултатите . Тестовете  за намиране  на обхвата  
позволяват  избор  на подходящи  концентрации  на дозата . 
Минимум  три дублиращи  тестови  групи , всяка  с 10 пчели , се 
дозират  с всяка  тествана  концентрация . 
Минимум  три контролни  групи , всяка  от 10 пчели , действат  
допълнително  и се включват  към сериите  за тестване . Ако се 
използват  органичен  разтворител  или мокрещо  вещество , се 
включват  и три допълнителни  контролни  групи , всяка  от 10 
пчели  за разтворителя  или мокрещото  вещество . 
1.6.2.  Стандарти  на токсичност  
Токсичният  стандартът  на токсичност  трябва  да се включи  в 
тестовите  серии . Избират  се най-малко  три дози , за да се 
обхване  очакваната  LD  50 стойност . С всяка  доза следва  да се 
използват  минимум  три дублиращи  клетки , всяка  съдържаща  
10 пчели . Предпочитаният  токсичен  стандарт  е диметоат , за 
който  докладваната  контактна  LC  50 - 24 часа е в 0,10—0,35 μg 
активно  вещество /пчела  (2). Обаче  други  токсични  стандарти  
биха  били  приемливи , когато  достатъчно  данни  могат  да бъдат  
предоставени , за да се провери  очаквания  ефект  от дозата  
(например  паратион ). 
1.6.3.  Експозиция  
1.6.3.1.  Приемане  на дозите  
Упоените  пчели  поотделно  се третират  чрез локално  прилагане  
на тестваното  вещество . Пчелите  получават  на случаен  принцип  
различни  тествани  и контролни  дози . Количество  от 1 μg 
разтвор , съдържащ  тестваното  вещество  при подходяща  конце­  
нтрация , се прилага  с микроапликатор  към гръбната  част на 
торакса  на всяка  пчела . Ако са оправдани , се използват  и 
други  количества . След  прилагането  пчелите  се разпределят  по 
клетките  и се захранват  със захаросан  разтвор . 
1.6.3.2.  Продължителност  
За предпочитане  е продължителност  на теста  от 48 часа. Ако 
смъртността  продължи  да се увеличава  с повече  от 10 % между  
първите  24 и 48 часа, продължителността  на теста  се увеличава  
на максимума  от 96 часа, при условие  че контролната  смъртност  
не превиши  10 %.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1190
 
1.6.4.  Наблюдения  
Смъртността  се записва  на четвъртия  час след  започване  на 
теста  и след  това на 24 и 48 часа (т.е. след  даване  на дозата ). 
Ако се налага  удължен  период  за наблюдения , се правят  по- 
нататъшни  оценки  за интервал  от 24 часа, до максимум  от 96 
часа, при условие  че контролната  смъртност  не превиши  10 %.  
Всяко  наблюдавано  въздействие  на анормално  държание  по 
време  на теста  се записва . 
1.6.5.  Ограничен  тест 
В някои  случаи  (например  когато  се очаква  тестваното  вещество  
да е с ниска  токсичност ) се извършват  ограничени  тестове , като 
се използва  100 μg активно  вещество /пчела  с цел да се демо­  
нстрира , че стойността  на LD  50 е по-голяма  от тази стойност . 
Следва  да се използва  същата  процедура  чрез включване  на три 
дублиращи  тестови  групи  за тествана  доза, съответните  
контролни  групи  и използването  на токсичния  стандарт . Ако 
се появи  смъртност , следва  да се извърши  цялостно  изследване . 
Ако се наблюдава  сублетално  въздействие , то се записва  (вж. 
точка  1.6.4).  
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. ДАННИ  
Данните  се сумират  в таблична  форма , като се посочва  за всяка  
третирана  група  контролните  и стандартно  токсичните  групи  със 
стандартна  токсичност , броят  на използваните  пчели , 
смъртността  за всеки  наблюдаван  период  от време  и броят  на 
пчелите  с анормално  поведение . Анализирайте  се данните  за 
смъртността  чрез подходящи  статистически  методи  (например  
точен  анализ , подвижна  средна  стойност  и вероятност  за 
биномно  разпределение ) (3) (4). Изобразете  графично  кривите , 
които  отговарят  на дозите  за всяко  препоръчано  време  за набл­  
юдение  изчислява  (т.е. 24, 48 и, ако е от значение , на 72 и 96 
часа), и изчислете  наклона  на кривите  и медианата  на леталните  
дози  (LD  50 ) c 95 % граници  на сигурност . Коригирането  на 
контролната  смъртност  може  да се направи  като се използва  
поправката  на Абот  (4) (5). LD  50 се изразява  в μg от тестваното  
вещество  за пчела . 
2.2 ОТЧИТАНЕ  НА ТЕСТА  
Отчетът  за теста  трябва  да съдържа  следната  информация : 
2.2.1.  Тествано  вещество : 
— физична  природа  и съответните  физико -химични  свойства  
(например  устойчивост  на водата , парно  налягане ); 
— данни  за химичната  характеристика  определеност  включ­  
ително  структурната  формула , чистота  (т.е. при пестицидите  
определяне  и концентрация  на активното  вещество (а). 
2.2.2.  Тествани  видове : 
— научно  наименование , род, приблизителна  възраст  (в 
седмици ), метод  на събиране , дата на събиране , 
— информация  за използваните  колонии , използване  за 
събиране  на пчелите  за теста , включително  здраве  и забо­  
ляване  при възрастни  индивиди , всякаква  предварителна  
обработка  и т.н. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1191
 
2.2.3.  Условия  на теста : 
— температура  и съответната  влажност  на експерименталното  
помещение ; 
— условия  на настаняване  включително  вид, размер  и материал , 
от който  е направена  клетката ; 
— методи  за приемане  на тестваното  вещество , т.е. 
използваният  носещ  разтвор , количеството  приложено  
тествано  вещество , използваното  упойващо  вещество ; 
— проектиране  на метода , т.е. броя  и използваните  тествани  
концентрации , броя  на контролите ; за всяка  тествана  конце­  
нтрация  и контрола , броя  на дублиращите  клетки  и броя  на 
пчелите  в клетка ; 
— дата на извършване  на теста . 
2.2.4.  Резултати : 
— резултати  от предварителното  изследване  за откриване  на 
обхвата , ако е извършвано ; 
— груби  данни : смъртност  за всяка  тествана  доза при всяко  
наблюдавано  време , 
— диаграма  на кривите  на реакция  към дозите  в края  на теста ; 
— стойности  на LD  50 c 95 % граници  на сигурност  за всяко  
време , препоръчано  за наблюдение , за тестваното  вещество  
и стандарта  на токсичност ; 
— статистически  процедури , използвани  за определяне  на LC  50 ; 
— смъртност  при контролите ; 
— други  биологически  ефекти , наблюдавани  или измерени , и 
анормално  поведение  на пчелите ; 
— всички  отклонения  от описаната  процедура  на метода  на 
теста  и всяка  друга , отнасяща  се до това информация . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) EPPO/Council of Europe (1993). Decision-Making Scheme for 
the Environmental Risk Assessment of Plant Protection 
Products ó Honeybees. EPPO bulletin, Vol. 23, N.1, 
pp. 151—165. March 1993.  
(2) Gough, H. J., McIndoe, E. C, Lewis, G. B. (1994). The use of 
dimethoate as a reference compound in laboratory acute toxicity 
tests on honeybees ( Apis mellifera  L.), 1981-1992. Journal of 
Apicultural Research 22, pp. 119—125.  
(3) Litchfield, J. T. and Wilcoxon, F. (1949). A simplified method 
of evaluating dose-effect experiments. Jour. Pharmacol. and Exper. Ther., 96, pp. 99—113.
 
(4) Finney, D. J. (1971). Probit Analysis. 3rd ed., Cambridge, 
London and New York.  
(5) Abbott, W. S. (1925). A method for computing the effectiveness 
of an insecticide. Jour. Econ. Entomol. 18, pp. 265—267.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1192
 
В.18. АДСОРБЦИЯ /ДЕСОРБЦИЯ  ЧРЕЗ  ИЗПОЛЗВАНЕ  МЕТОДА  
ЗА РАВНОВЕСИЕ  В ГРУПАТА  
1. МЕТОД  
Този  метод  е точно  копие  на ОИСР  TG 106 за определяне  на 
адсорбцията /десорбцията  на почвата  с използване  на метода  за 
равновесие  в групата  (2000).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Методът  взима  под внимание  кръговите  тестове  и помещението  
за избор  на почвата  за извършване  на теста  за адсорбция  (1) (2) 
(3) (4) и освен  това съществуващите  насоки  на национално  ниво  
(5) (6) (7) (8) (9) (10) (11).  
Проучванията  на адсорбцията /десорбцията  са полезни  за 
генериране  на основната  информация  за подвижността  на 
химикалите  и тяхното  разпространение  в почвата , водата  и 
въздуха  (12) (13) (14) (15) (16) (17) (18) (19) (20) (21). Информацията  
може  да се използва  при предвиждане  и изчисляване  например  
наличността  на химикали  при разграждане , преобразуване  и 
поглъщане  от организмите  (24); просмукване  през повърхността  
на почвата  (16) (18) (19) (21) (25) (26) (27) (28); изпаряемост  от 
почвата  (21) (29) (30); оттичане  от повърхността  на земята  в 
естествените  води  (18) (31) (32). Могат  да се използват  данни  за 
адсорбцията  за сравнителни  цели  и моделиране  (19) (33) (34) (35).  
Разпространението  на химикали  между  земната  и водната  фаза  е 
сложен  процес , който  зависи  от броя  на различните  фактори : 
химична  природа  на веществото  (12) (36) (37) (38) (39) (40), 
характеристиките  на почвата  (4) (12) (13) (14) (41) (42) 43) 
(44) (45) (46) (47) (48) (49) и климатичните  фактори  като 
валежи , температура , слънчева  светлина  и вятър . Следователно  
многобройните  явления  и механизми , които  са включени  в 
процеса  на адсорбция  на химикалите  от почвата , не могат  
напълно  да се определят  чрез обикновен  лабораторен  модел , 
какъвто  е представения  метод . Обаче , дори  ако този опит  не 
може  да обхване  всички  възможни  екологични  случаи , той 
предоставя  разнообразна  информация  за екологичната  значение  
на адсорбцията  на дадено  химично  вещество . 
Вижте  също  общия  предговор . 
1.2. ОБХВАТ  
Методът  цели  изчисляване  на адсорбцията /десорбцията  на 
веществата  в почвата . Целта  е да се постигне  стойност  на 
сорбция , която  може  да бъде  използвана  при предвиждане  
разделянето  при различни  екологични  условия ; за тази цел коеф­  
ициентите  на равновесие  на адсорбцията  за химикали  при 
различни  видове  почви , се определя  като функция  на 
характеристиките  на почвата  (т.е. съдържание  на органичен  
въглерод , съдържание  на глина  и строеж  на почвата  и рН). 
Трябва  да се използват  различни  видове  почви , за да се 
обхване  колкото  е възможно  по-широко  взаимодействието  на 
даденото  вещество  с естествено  появилите  се почви . 
В този метод  адсорбция  представлява  процесът  на съединяване  
на химикала  с повърхността  на почвата ; той не прави  разлика  
между  различните  процеси  на адсорбция  (физична  и химична  
адсорбция ) и тези процеси  като катализирано  разлагане  на 
повърхността , адсорбция  на основната  маса  и химична  
реакция . Не се взима  предвид  адсорбцията , която  се появява  
при колоидалните  частици  (диаметър  < 0,2 μm), генерирани  от 
почвите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1193
 
Характеристиките  на почвата , които  са считат  за най-важни  за 
адсорбцията  са: съдържание  на органичен  въглерод  (3) (4) (12) 
(13) (14) (41) (43) (44) (45) (46) (47) (48); съдържание  на глина  и 
механична  структура  на почвата  (3) (4) (41) (42) (43) (44) (45) 
(46) (47) (48) и рН за съединенията , които  могат  да се йонизират  
(3) (4) (42). Другите  характеристики  на почвата , които  могат  да 
имат  въздействие  върху  адсорбцията /десорбцията  на определено  
вещество  са капацитетът  на действителния  катионен  обмен  
(ЕСЕС ), съдържанието  на аморфно  желязо  и алуминиеви  
оксиди , по-специално  за вулканичните  и тропически  почви  (4), 
както  и за специфичните  повърхности  (49).  
Проучването  се планира , за да се извърши  оценка  на 
адсорбцията  на химикалите  върху  различни  видове  почви  с 
различно  съдържание  на органичен  въглерод , глина  и 
механична  структура  на почвата , и рН. Той обхваща  три редици : 
Фаза  1: Първоначално  проучване  с цел да се определи : 
— отношението  почва /разтвор ; 
— равновесно  време  на адсорбция  и количеството  
тествано  вещество , задържано  на повърхността  
при равновесие ; 
— адсорбцията  на тестваното  вещество  върху  почвата  
в съдовете  за тестване  и устойчивостта  на 
тестваното  вещество  по време  на периода  на 
проучване . 
Фаза  2: Екранен  анализ : адсорбцията  се изучава  при пет 
различни  видове  почви  чрез адсорбна  кинетика  при 
една  концентрация  и определяне  коефициента  на 
разпространение  K d и К ос . 
Фаза  З: Определяне  на адсорбните  изотерми  на Фройндлих , за 
да се определи  въздействието  на концентрацията  върху  
обхвата  на адсорбцията  върху  почвата . 
Проучвания  на десорбция  чрез десорбна  кинетика /­ 
десорбционни  изотерми  на Фройндлих  (приложение  1). 
1.3. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И ЕДИНИЦИ  
Символи  Определения  Единици  
A t i Процент  адсорбция  при време  t i % 
A eq Процент  адсорбция  при адсорбционно  равновесие  %  
m s ads ðt i Þ Маса  на тестваното  вещество , адсорбирано  върху  
почвата  при време  t i μg 
m s ads ðΔt i Þ Маса  на тестваното  вещество , адсорбирано  върху  
почвата  при интервал  от време  Δ t i μg 
m s ads ðeqÞ Маса  на тестваното  вещество , адсорбирано  върху  
почвата  при адсорбно  равновесие  μg 
m 0 Маса  на тестваното  вещество  в тръбата  за тестване  в 
началото  на теста  за адсорбция  μg 
m m ads ðt i Þ Маса  на тестваното  вещество  измерено  в аликвотна  
част при определено  време  t i μg 
m ap ads ðecÞ Маса  на тестваното  вещество  в разтвор  при 
адсорбционно  равновесие  μg 
m sol Количество  почвена  фаза , изразена  чрез сухата  маса  на 
почвата  g ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1194
 
Символи  Определения  Единици  
C sm Концентрация  на масата  на основния  разтвор  на 
веществото  μg cm  -3 
C 0 Първоначална  концентрация  на масата  на тествания  
разтвор  при контакт  с почвата  μg cm  -3 
C ap ads ðt i Þ Концентрация  на масата  веществото  във водната  фаза  
при адсорбционно  равновесие  μg cm  -3 
C s ads ðeqÞ Първоначално  количество  на водната  фаза  при 
контакта  с почвата  по време  на теста  за адсорбция  μg g  -1 
C ap ads ðeqÞ Концентрация  на масата  на веществото  във водната  
фаза  при време  ti и извършен  анализ  μg cm  -3 
V 0 Съдържание  на веществото , задържано  върху  почвата  
при адсорбно  равновесие  cm 3 
v a A Количество  аликвотна  част, в която  се измерва  
тестваното  вещество  cm 3 
K d Коефициент  на разпространение  на адсорбцията  cm  3 g -1 
K co Коефициент  на нормализирана  адсорбция  на органичен  
въглерод  cm 3 g -1 
K so Коефициент  на нормализирано  разпространение  на 
органични  частици  cm 3 g -1 
K F ads Коефициент  на адсорбция  на Фройндлих  μg 1-1/n (cm  3 ) 1/n g -1 
1/n Степенен  показател  на Фройндлих  
D t i Процент  на десорбция  при определено  време  t i % 
D Δt i Процент  на десорбция , съответстващ  на интервала  от 
време  Δ t i % 
K des Коефициент  на явна  десорбция  cm  3 g -1 
K F des Коефициент  на десорбция  на Фройндлих  μg 1-1/n (cm  3 ) 1/n g -1 
m ap des ðt i Þ Маса  на тестваното  вещество , десорбирано  от почвата  
при време  t i μg 
m ap des ðΔt i Þ Маса  на тестваното  вещество , десорбирано  от почвата  
при интервал  от време  Δ t i μg 
m m des ðecÞ Маса  на веществото , определена  аналитично  във 
водната  фаза  при десорбно  равновесие  μg 
m ap des ðecÞ Обща  маса  на веществото  при десорбно  равновесие  μg 
m s des ðΔt i Þ Маса  на веществото , което  остава  адсорбирано  върху  
почвата  след  интервал  от време  Δ t i μg 
m ap A Маса  на веществото , което  остава  отгоре  от 
адсорбното  равновесие  заради  непълен  обем  
заместване  μg 
C s des ðeqÞ Съдържание  на веществото , задържано  върху  почвата  
при десорбно  равновесие  μg g  -1 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1195
 
Символи  Определения  Единици  
C ap des ðecÞ Концентрация  на масата  тестваното  вещество  във 
водната  фаза  при десорбно  равновесие  μg cm  -3 
V T Общ  обем  на водната  фаза  в контакт  с почвата  по 
време  на извършване  на експеримента  на десорбната  
кинетика  с последователен  метод  cm 3 
V R Обем  на плаващите  отгоре  частици , отстранени  от 
тръбата  след  постигане  на адсорбното  равновесие  и 
заместване  със същия  обем  от 0,01 Μ СаСl 2 разтвор  cm 3 
v a D Обем  на аликвотната  част, изпробвана  за аналитични  
цели  за време  (i), през извършване  на експеримента  на 
десорбната  кинетика  с последователен  метод  cm 3 
V r i Обем  на разтвора , взет от тръбата  (i) за изчисляване  на 
тестваното  вещество  в експеримента  на десорбц­  
ионната  кинетика  (с паралелен  метод ) cm 3 
V r F Обем  на разтвора , взет от тръбата  (i) за изчисляване  на 
тестваното  вещество  при десорбно  равновесие  cm 3 
BM Обемен  баланс  % 
m E Обща  маса  на тестваното  вещество , извлечено  от 
почвата  и стените  на съда  за тестване  в два етапа  μg 
V rec Обем  на откритите  плаващи  отгоре  частици  след  
адсорбционното  равновесие  cm 3 
P oa Коефициент  на разделението  октанол /вода  
pKa Константа  на разпадане  Водоразтворимост  
S a Водоразтворимост  g l  -1 
1.4 ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Към пробите  от почва  с познато  сухо  тегло , което  и било  
предварително  блансирано  от 0,01 М СаСl 2 , се прибавят  
известни  количества  разтвор  от тестваното  вещество , не- 
етикетирани  или радиоетикетирани  при известна  концентрация  
от 0,01 М СаСl 2 . Сместа  се разклаща  за подходящо  време . След  
това частиците  почва  се отделят  чрез центрофуга  и ако се 
нуждае  се филтрират  и се анализира  водната  фаза . Количеството  
адсорбирано  тествано  вещество  върху  пробите  от почва  се 
изчислява  като разликата  между  количеството  тествано  
вещество  първоначално  представено  в разтвора  и количеството , 
оставащо  вещество  в края  на експеримента  (индиректен  метод ). 
Като  вариант , количеството  от адсорбирано  тествано  вещество  
може  също  директно  да се определи  чрез анализиране  на 
почвата  (директен  метод ). Тази  процедура , която  включва  
извличане  на етапи  на почвата  с подходящ  разтвор , се 
препоръчва  в случаите , когато  не може  да се определи  точно  
разликата  в концентрацията  на разтвора  на веществото . Примери  
за такива  случаи  са: адсорбция  на тестваното  вещество  върху  
повърхността  на съдовете  за тестване , неустойчивостта  на 
тестваното  вещество  за времето  на експеримента , слаба  
адсорбция , даваща  само  малко  изменение  в концентрацията  на 
разтвора ; и силна  адсорбция  произвеждаща  ниска  концентрация , 
която  не може  да бъде  точно  определена . Ако се използва  
радиоетикетирано  вещество , може  да се избегне  извличане  на 
почва  чрез анализ  на почвената  фаза  от изгаряне  и сцинт­  
илираща  течност . Обаче  сцинтилиращата  течност  е неспец­  
ифична  техника , която  не може  да направи  разлика  между  
изходния  и преобразуван  продукт ; следователно  се използва , 
само  ако тествания  химикал  е стабилен  за периода  на 
проучването . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1196
 
1.5. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ТЕСТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Химичните  реактиви  следва  да са в аналитичен  порядък . 
Препоръчва  се използването  на неетикетирани  тествани  
вещества  с известен  анализ  и за предпочитане  поне  95 % 
чистота  или използването  на радиоетикетирани  тествани  
вещества  с известен  състав  и радиочистота . В случаи  на 
индикатори  за кратки  периоди  на полуразпадане  се прилагат  
корекции  на разпадане . 
Преди  извършването  на теста  за адсорбция —десорбция , следва  
да е налице  следната  информация : 
а) водоразтворимост  (А.6); 
б) парно  налягане  (А.4) и/или константа  на закона  на Хенри ; 
в) абиотично  разлагане : хидролиза  като функция  на рН (В.7); 
г) коефициент  на разделянето  (А.8); 
д) готова  биоразложимост  (В.4) или аеробни  и анаеробни  
трансформации  в почвата ; 
е) рКа на веществата , които  могат  да се йонизират ; 
ж) директна  фотолиза  във водата  (т.е. UV-Vis спектър  на 
поглъщане  във вода , квантов  добив ) и разпадане  на свет­  
лината  върху  почвата . 
1.6. ПРИЛОЖИМОСТ  НА ТЕСТА  
Тестът  се прилага  за химични  вещества , за които  с достатъчна  
точност  се прилага  аналитичния  метод . Един  от важните  
параметри , който  може  да повлияе  на надеждността  на резулт­  
атите , особено  когато  се следва  индиректния  метод , е устойчи­  
востта  на тестваното  вещество  по време  на извършването  на 
теста . Така  необходимо  условие  е устойчивостта  да се провери  
при предварителното  изследване ; ако се наблюдава  изменение  в 
скалата  за време  през периода  на извършване  на теста , се 
препоръчва  основното  изследване  да се извърши  чрез 
анализиране  и на почвената  и на водната  фази . 
Могат  да се появят  трудности  при извършването  на това 
изследване  за тестваното  вещество  с ниска  водоразтворимост  
(S w < 10  -4 g l -1 ), както  и за високозаредените  вещества , заради  
факта , че концентрацията  при водната  фаза  не може  да бъде  
измерена  аналитично  с достатъчна  точност . В тези случаи  
следва  да се предприемат  допълнителни  стъпки . Насоки  за 
това как да се справим  с тези проблеми  са дадени  в съответния  
раздел  за този метод . 
Когато  се изпитват  летливи  вещества , се полагат  грижи  да се 
избегнат  загубите  по време  на проучването . 
1.7. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.7.1  Апаратура  и химични  реактиви  
Стандартно  лабораторно  оборудване , и по-специално  следното : 
а) Тръби  и съдове  за извършване  на експеримента . Важно  е тези 
тръби  и съдове  да: 
— пасват  директно  на апарата  за центрофуга , за да се сведат  
до минимум  грешки  при управлението  и прехвърлянето ; 
— са направени  от инертни  материали , които  намаляват  до 
минимум  адсорбцията  на тестваното  вещество  върху  
неговата  повърхност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1197
 
б) Разклащащо  устройство : горен  вибратор  или еквивалентно  
оборудване ; разклащащото  устройство  запазва  почвата  в 
разтвора  по време  на разбъркването . 
в) Центрофуга : за предпочитане  високоскоростна , т.е. сила  на 
центрофугиране  > 3 000 g, контролирана  температура , 
възможност  да се отстраняват  частиците  с диаметър  по- 
голям  от 0,2 μm от водния  разтвор . Контейнерите  следва  да 
са затворени  по време  на разклащането  и центрофугата , за да 
се избегне  изпаряване  и загуби  на вода ; за да се избегне  
адсорбция , се използват  дезактивирани  капачки  като 
тефлонова  капачка  с права  резба . 
г) По избор : филтриращо  устройство ; филтри  от 0,2 μm 
порьозност , стерилни , за еднократна  употреба . Специално  
внимание  са обръща  на избора  на филтриращ  материал , за 
да се избегнат  всякакви  загуби  от тестваното  вещество ; за 
ниско  разтворимите  тествани  вещества , не се препоръчва  
органичен  филтриращ  материал . 
д) Аналитична  контролно -измервателна  апаратура , подходяща  
за измерване  концентрацията  на тестваните  химикали . 
е) Лабораторна  пещ, способна  да поддържа  температура  
от 103  o С до 110  o С. 
1.7.2.  Характеристика  и избор  на почви  
Почвите  се характеризират  по три параметри , за които  се счита , 
че от тях до голяма  степен  зависи  капацитетът  за адсорбция : 
органичен  въглерод , съдържание  на глина  и структура  на 
почвата , и рН. Както  вече се спомена  (вж. Обхват ) и други  
физико -химични  свойства  могат  да окажат  влияние  върху  
адсорбцията /десорбцията  но отделните  вещества  и следва  да се 
вземат  предвид  в такива  случаи . 
Методите , които  се използват  за характеризиране  на почвите , са 
много  важни  и могат  да имат  значително  въздействие  върху  
резултатите . Следователно  се препоръчва  рН на почвата  да 
бъде  измерено  в разтвор  от 0,01 Μ СаСl 2 (това е разтворът , 
използван  при тестване  на адсорбцията /десорбция ) съгласно  
съответстващия  ISO метод  (ISO-10390-1). Също  се препоръчва  
да се определят  и други  съответни  свойства  на почвата , съгласно  
стандартните  методи  (например  ISO Наръчник  на анализа  на 
почвата ); той разрешава  анализа  на данните  за сорбция  да са 
базирани  на световните  стандартизирани  параметри  на почвата . 
Някои  ръководства  за съществуващите  стандартни  методи  за 
анализ  на почвата  и нейните  характеристики  са дадени  в 
раздела  използвана  литература  (50-52). За тарирането  на 
методите  за изпитване  на почвата  се препоръчва  употребата  на 
почва  за сравнение . 
В таблица  1 е дадено  ръководство  за избор  на почви  при 
изследване  на адсорбцията /дисорбцията . Седемте  избрани  вида  
почви  покриват  видовете  почва , които  се срещат  в умерените  
географски  пояси . За тестваните  вещества , които  могат  да се 
йонизират , избраните  почви  покриват  широк  интервал  от рН с 
цел да е възможно  изчисляване  на адсорбция  на веществото  в 
неговите  йонизирана  и нейонизирана  форми . Ръководство  за 
това колко  различни  видове  почви  трябва  да се използват  при 
различните  стадии  от теста  е дадено  под 1.9 „Извършване  на 
теста “. 
Ако се предпочетат  други  видове  почви , те се характеризират  
със същите  параметри  и следва  да имат  подобна  променливост  
на свойствата , с тези, които  са описани  в таблица  1, дори  и да не 
съответстват  точно  на критериите . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1198
 
Таблица  1 
Ръководство  за избор  на почви  при изследване  на адсорбцията /десорбцията  
Вид на почвата  Обхват  на рН (в 
0,01M CaCl  2 ) Съдържание  на 
органичен  въглерод  
( %) Съдържание  на глина  
( %) Структура  на 
почвата  ( 1 ) 
1 4,5—5,5 1,0—2,0 65—80 глина  
2 >7,5 3,5—5,0 20—40 песъчлива  глина  
3 5,5—7,0 1,5—3,0 15—25 утаечна  глина  
4 4,0—5,5 3,0—4,0 15—30 глинест  льос  
5 < 4,0—6,0 (  2 ) <0,5—1,5 (  2 ), ( 3 ) <10—15 (  2 ) глинест  пясък  
6 >7,0 <0,5—1,0 (  2 ), ( 3 ) 40—65 песъчлива  
глина /глина  
7 <4,5 >10 <10 пясък /глинест  
пясък  
( 1 ) Според  ФАО  и американската  система  (85). 
( 2 ) Съответните  променливи  следва  да показват  предимно  стойности  в дадения  обхват . В случай  обаче , че се 
появят  трудности  при намирането  на подходящ  почвен  материал , приемат  се стойности  и под посочения  
минимум . 
( 3 ) Почви  с наличие  на по-малко  от 0,3 % органичен  въглерод  могат  да нарушат  корелацията  между  органичното  
съдържание  и адсорбцията . Следователно  се препоръчва  използването  на почвите  с минимално  съдържание  на 
органичен  въглерод  от 0,3 %.  
1.7.3.  Събиране  и съхраняване  на проби  от почва  
1.7.3.1.  Събиране  
Не се препоръчват  никакви  специални  техники  или средства  за 
събиране  на пробите ; техниките  за събиране  на проби  зависят  от 
целта  на проучването  (53) (54) (55) (56) (57) (58).  
Следва  да се вземе  предвид : 
а) необходима  ли е подробна  информация  за историята  на 
площадката ; това включва  разположение , растителна  
покривка , обработка  с пестициди  и/или торове , биологични  
добавки  и случайни  замърсявания . Следват  се препоръките  на 
ISO стандарта  за взимане  проби  от почвата  (ISO 10381-6) по 
отношение  на описанието  на мястото , откъдето  са взети  
пробите ; 
б) мястото , откъдето  са взети  пробите , трябва  да се определи  
чрез UTM или географските  координати ; това позволява  
повторно  събиране  на отделните  почви  за в бъдеще  и може  
да помогне  при определяне  на почвите  при различните  клас­  
ификационни  системи , които  се използват  в различните  
страни . Освен  това, следва  да се събира  само  хоризонт  А 
до максимум  20 cm дълбочина . Особено  за вид почва  n. 7, 
ако O h хоризонтът  е представен  като част от почвата , той 
следва  да се включи  във взимането  на проби . 
Пробите  от почва  се транспортират  като се използват  
контейнери  и при определени  температурни  условия , които  
гарантират , че първоначалните  свойства  на почвата  няма  да се 
изменят  значително . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1199
 
1.7.3.2.  Съхраняване  
Предпочита  се използването  на току -що взети  от площадката  
почви . Само  ако това не е възможно , почвите  могат  да се 
съхраняват  при температура  на околната  среда  и се пазят  
изсушени  на въздух . Не се препоръчва  ограничаване  на 
времето  за съхраняване , но почви , които  се съхраняват  повече  
от три години  се анализират  отново  преди  употребата  с оглед  на 
тяхното  съдържание  на органичен  въглерод , рН и СЕС  (кап­  
ацитета  на действителния  катионен  обмен ). 
1.7.3.3  Обслужване  и подготовка  на проби  от почва  за теста  
Почвите  се изсушават  при въздух  с температура  на околната  
среда  (за предпочитане  между  20—25  o С). Отделянето  на 
частиците  се извършва  с минимална  сила , така че оригиналната  
структура  на почвата  да се измени  колкото  е възможно  по- 
малко . Почвите  се пресяват  за частици  с размер  ≤ 2mm; 
следват  се препоръките  на ISO стандарта  за взимане  проби  от 
почвата  (ISO 10381-6) по отношение  на процеса  на пресяване . 
Препоръчва  се внимателно  хомогенизиране , тъй като това 
повишава  възпроизводимостта  на резултатите . Съдържанието  
на влага  за всяка  почва  се определя  на три съизмерими  части  
с нагряване  от 105  o С, докато  няма  значително  изменение  в 
теглото  (приблизително  12 часа). За всички  изчисления  масата  
на почвата  се отнася  до масата  след  изсушаване  в пещ, т.е.от 
теглото  на почвата  се отстранява  съдържанието  на влага . 
1.7.4.  Подготовка  на тестваното  вещество  за прилагане  върху  
почвата  
Тестваното  вещество  се разтваря  в разтвор  от 0,01 Μ СаСl 2 в 
дестилирана  или дейонизирана  вода ; разтворът  на СаСl 2 се 
използва  като фаза  на воден  разтвор  за да се подобри  
центрофугата  и да се минимизира  обмяната  на катиони . Конце­  
нтрацията  на основния  разтвор  е за предпочитане  да бъде  три 
степени  по-висока  от границата  на откриване  при използване  на 
аналитичния  метод . Този  праг  запазва  точни  измерванията  по 
отношение  на методологията , следвана  от този метод ; в 
допълнение , концентрацията  на основният  разтвор  следва  да 
бъде  под нивото  на разтворимост  на водата  на тестваното  
вещество . 
Основният  разтвор  за предпочитане  се приготвя  точно  преди  
прилагането  върху  пробите  от почва  и се запазва  затворен  на 
тъмно  при 4 o С. Времето  на съхраняване  зависи  от устойчи­  
востта  на тестваното  вещество  и неговата  концентрация  в 
разтвора . 
Само  при слабо  разтворимите  вещества  (S w < 10  -4 g l -1 ) може  да 
има нужда  от подходящ  разтварящ  фактор , когато  е трудно  да се 
разтвори  тестваното  вещество . Това  разтварящо  вещество : а) се 
смесва  с вода , както  и с метанол  и ацетонитрил ; б) неговата  
концентрация  не надвишава  1 % от общото  количество  на 
основния  разтвор  и е по-малка  от тази в разтвора  на тестваното  
вещество , което  ще бъде  в контакт  с почвата  (за предпочитане  
по-малко  от 0,1 %); и в) да не е повърхностно  активно  вещество  
или да не влиза  в солволизни  реакции  с тестваното  вещество . 
Употребата  на разтварящ  агент  се уговаря  и обяснява  при 
отчитането  на данните . 
Друга  възможност  за слабо  разтварящите  се вещества  е да се 
добави  тестваното  вещество  към системата  на тестване  чрез 
прибавяне : тестваното  вещество  е разтворено  в органичен  разт­  
ворител , аликвотната  част на който  се прибавя  към почвената  
система  и 0,01 Μ разтвор  от СаСl 2 в дестилирана  или 
дейонинизирана  вода . Съдържанието  на органичния  разтворител  
във водната  фаза  се запазва  колкото  е възможно  по-ниско , обик­  
новено  не превишава  0,1 %. Прибавянето  от органичен  разтвор  
може  да пострада  от обема  на неповторимост . Така  може  да се 
допуснат  допълнителни  грешки , тъй като тестваното  вещество  и 
концентрацията  на коразтворителя  няма  да бъдат  същите  при 
всички  изпитвания . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1200
 
1.8. НЕОБХОДИМИ  УСЛОВИЯ  ЗА ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТА  ЗА 
АДСОРБЦИЯ /ДЕСОРБЦИЯ  
1.8.1.  Аналитичен  метод  
Основните  параметри , които  могат  да повлияят  върху  точността  
за измерване  на сорбцията , включват  точност  на аналитичния  
метод  при анализ  на разтвора  и адсорбционната  фаза , 
величината  на изменение  на концентрацията  на разтвора , отнош­  
ението  почва /разтвор  и измененията  в структурата  на почвата  
през време  на равновесния  процес  (35) (59-62). Някои  примери  
за точността  са дадени  в приложение  2. 
Надеждността  на използвания  аналитичен  метод  трябва  да се 
провери  при стойност  на концентрация , която  е много  
вероятно  да се получи  по време  на теста . Извършващият  
експеримента  следва  да се чувства  свободен  да използва  
подходящия  метод  с подходящата  точност , прецизност , 
възпроизводимост , границата  на откриваемост  и възстановяване . 
Ръководство  как се извършва  такъв  тест е дадено  при 
експеримента  по-долу . 
Подходящо  количество  от 0,01 М СаСl 2 , т.е. 100 cm  3 се 
разбъркват  4 часа с почва , т.е. с тегло  20 g, на висока  поглъщ­  
ателна  способност , т.е. с високо  съдържание  на органичен  
въглерод  и глина ; тези тежести  и количества  могат  да варират  
в зависимост  от аналитичните  нужди , но отношението  почва /­ 
разтвор  от 1:5 е подходяща  опорна  точка . Сместа  се 
центрофугира  и водната  фаза  може  да се филтрира . Определено  
количество  тествано  вещество  основен  разтвор  се прибавя  по- 
късно  към първото , за да се постигне  номинална  концентрация  
със стойност , която  е вероятно  да се получи  по време  на теста . 
Това  количество  не превишава  10 % от крайното  количество  на 
водната  фаза , с цел да се измени  колкото  е възможно  по-малко  
вида  на пред -равновесния  разтвор . Разтворът  се анализира . 
С цел да се проверят  доказателствата  в аналитичния  метод  и 
матричните  ефекти , причинени  от почвата , трябва  да се 
включи  изпитване  на празен  ход, съдържащо  системата  
почва  + СаСl 2 разтвор  (без тестваното  вещество ). 
Аналитичните  методи , които  могат  да се използват  за измерване  
на разтворимостта , включва  газово -течна  хроматография  (GLC), 
високоефективна  течна  хроматография  (HPLC), спектрометрия  
(т.е. GC/тегло  спектрометрия , HPLC/ тегло  спектрометрия ) и 
броене  на течна  сцинтилация  (за радиоетикетирани  вещества ). 
Независимо  от използвания  аналитичен  метод , се счита  за 
подходящо , ако коефициентите  на усвояване  са между  90 % и 
110 % от номиналните  стойности . С цел да се позволи  
определяне  и оценка  след  разделянето , границите  на 
откриваемост  на аналитичния  метод  са поне  две степени  под 
номиналната  концентрация . 
Характеристиките  и границите  на откриваемост  на аналитичния  
метод , които  са на разположение  за извършване  на проучвания  
на адсорбцията , играят  важна  роля  при определяне  условията  на 
тестване  и цялостното  извършване  на експеримента . Този  метод  
следва  основната  пътека  за извършване  на експеримента  и 
осигурява  препоръки  и ръководство  при избор  на алтернативни  
разтвори , където  аналитичният  метод  и лабораторните  
съоръжения  могат  да поставят  ограничения . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1201
 
1.8.2.  Избор  на оптимално  отношение  почва /разтвор  
Изборът  на подходящо  съотношение  почва  към разтвор  за 
извършване  на проучване  на разтворимостта , зависи  от коеф­  
ициента  на разпространение  К d и съответната  степен  желана  
адсорбция . Изменението  на концентрацията  на веществото  в 
разтвора  определя  статистическата  точност  на измерването , 
което  се основава  на образуването  на адсорбционното  
уравнение  и границите  на аналитичната  методология , 
определяйки  концентрацията  на химикала  в разтвора . Следов­  
ателно  е полезно  общата  практика  да се установи  върху  малки  
фиксирани  съотношения , за които  процентът  на адсорбция  е над 
20 % и за предпочитане  е > 50 % (62), докато  се полагат  грижи , 
за да се запази  концентрацията  на тестваното  вещество  във 
водната  фаза , достатъчно  висока , за да се измери  точно . Това  
е особено  важно  в случаи  на високи  проценти  адсорбция . 
Правилният  подход  за избор  на подходящо  съотношение  почва /­ 
вода  се основава  на изчисляването  на стойността  на К d или чрез 
първоначално  проучване  или чрез създаване  техника  на изчис­  
ляването  (приложение  3). След  това може  да се направи  избор  
на подходящо  отношение , което  се основава  на схемата  на съот­  
ношението  почва /разтвор  противоположно  на К d за определения  
процент  на адсорбция  (фигура  1). На тази схема  е изчислено , че 
уравнението  на адсорбция  е линейно  ( 1 ). Отношенията , които  се 
прилагат  се постигат  чрез предварително  постигнато  уравнение  
(4) на K d във формата  на уравнение (1): 
V 0 
m půda ¼ Í 
m 0 
m p ads ðeqÞ Ä 1 Î 
K d (1) 
или в неговата  логаритмична  форма , изчисляваща , 
че R = m пръст =V 0 и m s ads ðeqÞ 
m 0 
logR ¼ ÄlogK  d þ log " 
ðA eq %=100Þ 
ð1 Ä A eq %=100Þ # (2)
 
Фигура  1 Отношения  между  съотношението  почва /разтвор  и К d при различните  
проценти  на адсорбирано  тествано  вещество  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1202  
( 1 ) C s ads ðeqÞ ¼ K  d · C aq ads ðeqÞ:
 Фигура  1 показва  съотношенията  почва /разтвор , които  се 
изискват  като функция  на К d за различните  нива  на адсорбция . 
Например  при отношение  почва /разтвор  1:5 и К d равно  на 20, 
получава  се приблизително  80 %. За да се постигнат  50 % 
адсорбция  за същото  К d , трябва  да се използва  отношение  
1:25. Този  подход  за избиране  на подходящото  съотношение  
почва /разтвор  дава на изследователите  гъвкавост  при 
посрещане  нуждите  на експеримента . 
По-трудните  области  са тези, където  химикалите  са високо  или 
много  слабо  адсорбирани . Където  има ниска  адсорбция , се 
препоръчва  съотношение  1:1, въпреки  че за някои  видове  
органични  соли  по-малкото  съотношение  може  де е необходимо  
за получаване  на смеси . Трябва  да се полагат  грижи  с аналит­  
ичната  методика , за да се измерят  малките  изменения  в конце­  
нтрацията  на разтвора ; иначе  измерването  на адсорбцията  ще е 
неточно . От друга  страна  при много  високи  коефициенти  на 
разпространение  К d , единият  може  се увеличи  при отношение  
почва /разтвор  1:100 с цел да се остави  значително  количество  от 
химикала  в разтвора . Обаче  трябва  да се полагат  грижи  за да се 
гарантира  доброто  смесване  и адекватното  време  трябва  да е 
позволено  от системата  за уравновесяване . Алтернативен  
подход  при тези изключения , когато  аналитичната  методология  
липса , е да се предвиди  стойността  на К d ,основана  на прил­  
ожимите  техники  за оценка , например  P  ow стойности  
(приложение  3). Това  ще е полезно  особено  за химикали  с 
ниско  адсорбни /полярни  химикали  с P ow < 20 и за липофилни /­ 
високо  сорбни  химикали  с P ow > 10  4 . 
1.9. ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТА  
1.9.1.  Условия  на извършване  на теста  
Всички  експерименти  са правят  при температура  на околната  
среда  и, ако е възможно , при постоянна  температура  между  
20 o С и 25 o С. 
Условията  на центрофугиране  позволяват  премахването  от 
разтвора  на частици  по-големи  от 0,2 μm. Тези  стойности  
пускат  частиците  с най-малък  размер , които  се считат  за 
твърди  частици  и това е ограничението  между  твърдите  и 
колоидните  частици . Насоки  как да се определят  условията  на 
центрофугиране  са дадени  в приложение  4. 
Ако съоръженията  за центрофуга  не могат  да гарантират  
отстраняването  на частици  по-големи  от 0,2 μm, може  да се 
използва  комбинация  от центрофуга  и филтрация . Тези  филтри  
следва  да са направени  от подходящ  инертен  материал , за да се 
избегнат  всякакви  загуби  на тестваното  вещество . При всички  
случаи  трябва  да се докаже , че няма  никакви  загуби  от 
тестваното  вещество  по време  на филтрацията . 
1.9.2.  Фаза  1 — Първоначално  проучване  
Целта  на извършването  на първоначално  проучване  беше  вече 
дадена  в раздела  „Обхват “. Ръководство  за регулирането  на 
такъв  тест е дадено  в дадените  по-долу  предложения . 
1.9.2.1.  Избор  на оптимално  съотношение  почва /разтвор  
Използват  се два вида  почви  и три съотношения  почва /разтвор  
(шест  експеримента ). Единият  вид почва  има високо  съдържание  
на органичен  въглерод  и ниско  съдържание  на глина , а другия  
има ниско  съдържание  на органичен  въглерод  и високо  
съдържание  на глина . Използват  се следните  отношения  почва /­ 
разтвор : 
— 50 g почва  и 50 cm  3 воден  разтвор  на тестваното  вещество  
(съотношение  1:1);  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1203
 
— 10 g почва  и 50 cm  3 воден  разтвор  на тестваното  вещество  
(съотношение  1:5);  
— 2 g почва  и 50 cm  3 воден  разтвор  на тестваното  вещество  
(съотношение  1:25).  
Минималното  количество  почва , с което  може  да се извърши  
експеримента  зависи  от лабораторните  съоръжения  и изпъ­  
лнението  на използвания  аналитичен  метод . Въпреки  това се 
препоръчва  да се използва  поне  1 g и за предпочитане  2 g c 
цел да се постигнат  надеждни  резултати  от теста . 
С цел да се провери  устойчивостта  на тестваното  вещество  в 
СаСl 2 разтвор  и неговата  възможна  адсорбция  върху  
повърхността  на съдовете  за тестване , една  контролна  проба  
само  с тестваното  вещество  при разтвор  0,01 М СаСl 2 (без 
почва ) е насочена  към точно  същите  стъпки  от системата , 
използвана  при теста . 
Изпитването  на празен  ход със същото  количество  почва  и обща  
маса  от 50 cm  3 на 0,01 М СаСl 2 (без тестваното  вещество ) е 
обект  на същата  процедура . То служи  като основен  контрол  
по време  на анализа , за да се определят  интерфериращите  
вещества  и замърсените  почви . 
Всички  експерименти , включително  контролните  и на празен  
ход, се извършват  поне  два пъти . Общият  брой  проби , които  
се приготвят  за проучването , може  да се изчислят  по 
отношение  на методологията , която  ще се следва . 
Методите  за първоначалните  проучвания  и основното  проучване  
са основно  еднакви , изключенията  са споменати , където  се 
отнасят . 
Пробите  почва , изсушени  на въздух  се уравновесяват  чрез 
разбъркване  с минимум  обем  от 45 cm  3 на 0,01 М СаСl 2 през 
цялата  нощ (12 часа) преди  деня  на експеримента . След  това се 
прибавя  определено  количество  от основния  разтвор  с цел да се 
приспособи  крайния  обем  към 50 cm  3 . Това  добавено  количество  
основен  разтвор : а) не надвишава  10 % от крайното  количество  
от 50 cm  3 на водната  фаза  с цел да се измени  колкото  е 
възможно  по-малко  природата  на разтвора  преди  равновесие ; и 
б) за предпочитане  завършва  с първоначална  концентрация  на 
тестваното  вещество , което  е в контакт  с почвата  (C 0 ) поне  две 
степени  по-високо  от границите  на откриваемост  на анал­  
итичния  метод ; тези прагове  запазват  възможността  да се 
извършват  точни  изчисления  дори  когато  има силна  адсорбция  
(> 90 %) и по-късно  да се определят  адсорбните  изотерми . Също  
се препоръчва , ако е възможно , първоначалната  концентрация  
на веществото  (C  0 ) да не надвишава  половината  от неговата  
граница  на разтворимост . 
По-долу  е даден  пример  за това как да се изчислява  конце­  
нтрацията  на основния  разтвор  (C  st ). Приема  се че границата  
на откриваемост  е 0,01 μg cm  -3 и има 90 % адсорбция ; така 
първоначалната  концентрация  на тестваното  вещество  в 
контакт  с почвата  за предпочитане  е 1 μg cm  -3 (две степени  
по-високо  от границата  на откриваемост ). Като  се предположи , 
че се прибавя  препоръчаното  максимално  количество  основен  
разтвор , т.е. от 5 до 45 cm  3 на 0,01 М СаСl 2 равновесен  
разтвор  (= 10 % от основния  разтвор  на 50 cm  3 обща  маса  на 
водната  фаза ), концентрацията  на основния  разтвор  е 10 μg cm  -3 ; 
това са трите  степени  по-високо  от границата  на откриваемост  
на аналитичния  метод . 
РН на водната  фаза  се измерва  преди  и след  контакта  с почвата , 
тъй като играе  важна  роля  в целия  процес  на адсорбция  и по 
специално  за веществата , които  се йонизират . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1204
 
Сместа  се разбърква , докато  не се постигне  адсорбционно  
равновесие . Времето  на равновесие  в почвата  е по-високо  
променливо  в зависимост  от химикала  и почвата ; период  от 24 
часа обикновено  е достатъчен  (77). В предварителното  
проучване  може  да се събират  проби , резултат  от 48-часов  
период  на смесване  (например  на 4, 8, 24, 48 часа). Обаче  
трябва  да се вземе  предвид  времето  на анализа , заедно  с гъвка­  
востта  по отношение  на работния  график  на лабораторията . 
Има два варианта  за анализ  на тестваното  вещество  във воден  
разтвор : а) паралелен  метод  и б) сериен  метод . Следва  да се 
наблегне  на това, че въпреки  паралелния  метод  изисква  много  
повече  време , математическата  обработка  на резултатите  е 
много  по-лесна  (приложение  5). Обаче  изборът  на методо­  
логията , която  трябва  да се следва  е оставен  на тези, които  
извършват  експеримента  и които  имат  нужда  да разгледат  
наличната  лабораторна  техника  и ресурси . 
а) паралелен  метод : приготвят  се проби  в съотношение  почва / 
разтвор , с такова  количество , каквото  е нужно  за изследване  
на адсорбните  кинетика  през отделните  интервали  от време . 
След  центрофугата  и ако се налага  филтрацията , водната  
фаза  на първата  тръба  се възстановява  колкото  е възможно  
повече  и след  това се измерва , например  след  4 часа, втората  
тръба  след  8 часа, третата  тръба  след  24 и т.н. 
б) сериен  метод : приготвя  се само  двойна  проба  за всяко  съот­  
ношение  почва /разтвор . При определени  интервали  от време  
сместа  се центрофугира  за да се разделят  фазите . Малка  
аликвотна  част от водната  фаза  незабавно  се анализира  за 
тестваното  вещество ; след  това експериментът  продължава  
с оригиналната  смес . Ако след  центрофугата  се прилага  
филтрация , то лабораторията  следва  да улесни  извършването  
на филтрация  на малката  водна  аликвотна  част. Препоръчва  
се общата  маса  на взетата  аликвотна  част да не надвишава  
1 % от общото  количество  разтвор  с цел да не се промени  
значително  отношението  почва /разтвор  и да се намали  масата  
на разтвореното  вещество , подготвено  за адсорбция  по време  
на теста . 
Процента  адсорбция  A t i се изчислява  за всяко  определено  време  
(t i ) на основата  на номиналната  първоначална  концентрация  и 
измерената  концентрация  за времето  на взимане  на пробите  (t i ), 
коригирано  със стойността  при празен  ход. Схемата  на A  t i противоположно  на времето  (фигура  1, приложение  5) се 
генерира  с цел да се изчисли  постигането  на равновесно  
плато  ( 1 ). К d стойността  при равновесие  също  се изчислява . 
Основано  на тази К d стойност , от фигура  1 се избира  
подходящо  съотношение  почва /разтвор , така че процентът  на 
адсорбция  да достигне  над 20 % и за предпочитане  > 50 % 
(61). Всички  приложими  уравнения  и принципи  на схемата  са 
дадени  в раздела  за данни  и отчитане  в приложение  5. 
1.9.2.2.  Определяне  на времето  на адсорбното  равновесие  и на колич­  
еството  адсорбирано  вещество  по време  на равновесие  
Както  вече се спомена , схемите  на A t i или C aq ads противоположно  
на времето , разрешава  изчисляване  на постигането  на адсорбно  
равновесие  и количеството  адсорбирано  тествано  вещество  по 
време  на равновесие . Фигури  1 и 2 в приложение  5 показват  
примери  за такива  схеми . Времето  на равновесие  е това, което  е 
необходимо  на системата , за да достигне  плато . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1205  
( 1 ) Схемите  на концентрацията  на тестваното  вещество  във водната  фаза  C  aq ads Ê Ì  
противоположно  на времето  също  може  да се използва  за да изчисли  постигането  
на равновесно  плато  (вж. фигура  2 в приложение  5).
 Ако с определен  вид почва  не се постигне  плато , а се открие  
стабилно  увеличаване , това може  да е в резултат  от усложнени  
фактори  като биоразлагане  или слаба  дифузия . Биоразлагането  
може  да се покаже  чрез повтаряне  на експеримента  със 
стерилизирана  проба  от почвата . Ако не се постигне  плато  
дори  и в този случай , тези, които  извършват  експеримента  
трябва  да се опитат  да открият  друго  явление , което  би могло  
да бъде  включено  в тяхното  специфично  изследване ; това може  
да се направи  с подходящо  изменение  на условията , при които  
се извършва  експериментът  (температура , време  на разбъркване , 
съотношение  почва /разтвор ). Оставено  е на преценката , на тези 
които  извършват  експеримента  да решат  дали  да продължат  
процедурата , въпреки  възможния  неуспех  при постигане  на 
равновесие . 
1.9.2.3.  Адсорбция  върху  повърхността  на съда  за тестване  и усто­  
йчивост  на тестваното  вещество  
От анализа  на контролните  проби  може  да се извлече  
информация  за адсорбцията  на тестваното  вещество  върху  
повърхността  на съда  за тестване , така също  и за неговата  усто­  
йчивост . Ако се наблюдава  отклонение  по-голямо  от 
стандартната  грешка  на аналитичния  метод , може  да се 
включи  и абиотично  разграждане  и/или адсорбция  върху  
повърхността  на съда  за тестване . Разграничаването  между  
тези две явления  може  да се постигне  чрез цялостно  почистване  
на стените  на съда  с познато  количество  подходящ  разтворител  
и подлагайки  почистващия  разтвор  на анализ  за тестваното  
вещество . Ако не се наблюдава  адсорбция  на повърхността  на 
съдовете  за тестване , то разграждането  показва  абиотичната  
нестабилност  на тестваното  вещество . Ако се открие  
адсорбция  е необходимо  да се сменят  материалите , от които  
са направени  съдовете  за тестване . Обаче  данните  за 
адсорбцията  върху  повърхността  на съдовете  за тестване , 
които  се получат  от този експеримент , не могат  директно  да 
се екстраполират  към експеримента  почва /разтвор . Присъ­  
ствието  на почва  ще повлияе  върху  тази адсорбция . 
Допълнителна  информация  за устойчивостта  на тестваното  
вещество  може  да се извлече  чрез определяне  на първоначалния  
баланс  на масата  през времето . Това  означава , че водната  фаза , 
екстрактите  от почвата  и стените  на съдовете  за тестване  са 
равни  на влошената  и/или изпарена  и/или не извлечена  маса . 
С цел да се определи  балансът  на масата  трябва  да е постигнато  
адсорбно  равновесие  за периода  на експеримента . 
Балансът  на масата  се извършва  върху  двете  почви  и за съот­  
ношението  почва /разтвор  за почвата , което  дава отклонение  от 
20 % и за предпочитане  от > 50 % при равновесие . Когато  
експеримента  за откриване  на отношението  завърши  с анализ  
на последната  проба  на водната  фаза  след  48 часа, фазите  се 
разделят  чрез центрофуга  и ако се е наложило  чрез филтрация . 
Водната  фаза  се възстановява  колкото  е възможно  повече  и към 
почвата  се прибавя  подходящ  екстрактен  разтворител  (коеф­  
ициент  на екстракция  поне  95 %) за да се извлече  тестваното  
вещество . Препоръчват  се поне  две успешни  извличания  на 
веществото . Определя  се количеството  тествано  вещество  в 
почвата  и се изчислява  балансът  на масата  (уравнение  10, 
данни  и отчитане ). Ако е по-малко  от 90 %, се счита , че 
тестваното  вещество  не е устойчиво  по време  на извършване  
на теста . Обаче  проучванията  могат  да продължат , като се 
вземе  предвид  неустойчивостта  на тестваното  вещество ; в този 
случай  се препоръчва  да се анализират  двете  фази  при 
основното  изследване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1206
 
1.9.2.4.  Фаза  2 — Адсорбна  кинетика  при една  концентрация  на 
тестваното  вещество  
Използват  пет вида  почви , избрани  от таблица 1. Предимство  е 
измежду  тези пет вида  почви , ако е подходящо , да се включат  
няколко  или всички , използвани  почви  по време  на предварит­  
елното  проучване . В този случай  фаза  2 не се повтаря  за 
почвите , които  са използвани  при предварителното  проучване . 
Времето  за достигане  на равновесно  състояние , съотношението  
почва /разтвор , теглото  на пробата  от почва , обемът  на водната  
фаза  в контакт  с почвата  и концентрацията  на тестваното  
вещество  в разтвора  се избират  на основата  на резултатите  от 
предварителното  проучване . За предпочитане  анализът  се прави  
приблизително  след  2, 4, 6, 8, ( възможно  и при 10) и 24 часа от 
времето  на контакт ; времето  на разбъркване  може  да се удължи  
на максимум  48 часа в случаите , когато  химикала  изисква  по- 
дълго  време  за постигане  на равновесно  състояние  с оглед  на 
резултатите  за намиране  на съотношението . Обаче  времето  за 
анализ  може  да се разглежда  гъвкаво . 
Всеки  експеримент  (един  вид почва  и един  разтвор ) се прави  
поне  два пъти  за да стане  възможно  изчисляването  променли­  
востта  на резултатите . При всеки  експеримент  се прави  едно  
пускане  на празен  ход. Той се състои  от почва  и 0,01 М СаСl 2 
без тестваното  вещество  и теглото  и съответно  обема  идентични  
на тези от експеримента . На същата  процедура  се подлага  и 
контролната  проба  само  с тестваното  вещество  в 0,01 М СаСl 2 
разтвор  (без почва ), служеща  за това да предпази  от неоч­  
акваното . 
Процентът  адсорбция  се изчислява  при определено  време  A t i и/или интервал  от време  A Δt i (в съответствие  с нуждата ) и се 
изобразява  графично  противоположно  на времето . Коефициента  
на разпределение  К d при равновесие , както  и коефициента  на 
нормализирана  адсорбция  на органичен  въглерод  К ос (за не 
полярните  органични  химикали ), също  си изчисляват . 
Резултати  от теста  за адсорбна  кинетика  
Стойността  на линейния  К d обикновено  е точна  за да опише  
поведението  при сорбция  в почвата  (35) (78) и представлява  
израз  на собствената  мобилност  на химикалите  в почвата . 
Например  главно  химикали  с К d ≤ 1 cm  3 g -1 се считат  за 
качествено  мобилни . Подобна  класификационна  схема  на 
мобилността , основана  на К оc стойността  се развива  чрез 
Маккол  (16). Допълнително  съществува  схема  за класификация  
на извличането , основана  на отношенията  между  К ос и DT-50 (  1 ) 
(32) (79).  
Също  така, в съответствие  с проучването  на допускането  на 
грешки  при анализ  (61), стойност  под 0,3 cm  3 g -1 не може  да 
се изчисли  точно  от намаляването  при концентрацията  във 
водната  фаза , дори  когато  се прилага  най-благоприятното  (от 
гледна  точка  на точността ) съотношение  почва /разтвор , т.е. 
1:1. В този случай  се препоръчва  анализ  и на двете  фази  — 
почва  и разтвор . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1207  
( 1 ) DT-50: времето  за разграждане  на 50 % от тестваното  вещество .
 С оглед  на посочените  по-горе бележки , се препоръчва  да се 
продължи  изследването  на поведението  на химикала  при 
адсорбция  в почвата  и неговата  потенциална  мобилност , чрез 
определяне  на Фройндлих  изотерми  на адсорбция  за тези 
системи , за които  е възможно  точното  определяне  на К d с 
протокол  за експеримента , воден  според  метода  на този тест. 
Точното  определяне  е възможно , ако стойността , която  чрез 
умножаване  на К d c отношението  почва /разтвор  ще е > 0,3, 
когато  измерванията  са основани  на намаляване  на конце­  
нтрацията  във водната  фаза  (индиректен  метод ) или ще е > 
0,1, когато  и двете  фази  са анализирани  (директен  метод ) (61).  
1.9.2.5.  Фаза  3 — Изотерми  на адсорбция  и кинетика /изотерми  на 
десорбция  
1.9.2.5.1 И з о т е р м и н а а д с о р б ц и я 
Използват  се пет концентрации  от тестваното  вещество , които  
покриват  за предпочитане  две степени  от скалата ; когато  се 
избират  тези концентрации , се вземат  предвид  разтворимостта  
във вода  и концентрациите  в резултат  на водното  равновесие . 
Същото  съотношение  почва /разтвор  за почвата  се запазва  по 
време  на проучването . Тестът  за адсорбция  се извършва  както  
е описано  по-долу  с една  разлика , че водната  фаза  се анализира  
само  веднъж  по време , когато  е необходимо  да се постигне  
равновесие , както  е определено  по-горе във фаза  2. Конце­  
нтрациите  при постигнато  равновесие  се определят  и 
адсорбираното  количество  се изчислява  от обедняването  на 
тестваното  вещество  в разтвора  или чрез директния  метод . 
Адсорбираната  маса  за единица  маса  почва  се представя  
графично  като функция  на концентрацията  при постигнато  
равновесие  на тестваното  вещество  (вж. данни  и отчитане ). 
Резултати  от експеримента  за изотерми  на адсорбция  
Измежду  досега  предложените  математически  модели  за 
адсорбция , изотермите  на Фройндлих  са най-често  използваните  
за да се опишат  процесите  на адсорбция . По-подробна  
информация  за прилагането  и важността  на модела  на 
адсорбция  се намира  в раздел  „Препратки “ (41) (45) (80) (82).  
Забележка : Трябва  да се отбележи , че сравняването  на K F 
(коефициента  на адсорбция  на Фройндлих ) стойността  за разл­  
ичните  вещества  е възможна  само  ако тези K F стойности  се 
изразяват  в същата  единица  (83).  
1.9.2.5.2. К и н е т и к а н а д е с о р б ц и я т а 
Целта  на експеримента  е да се открие  дали  химикалът  е 
реверсивно  или нереверсивно  адсорбиран  върху  почвата . Този  
информация  е важна , тъй като процеса  на десорбциа  също  играе  
важна  роля  за поведението  на химикала  в почвата . Нещо  повече , 
данните  от десорбцията  са полезни  при компютърното  
моделиране  на стимулирането  на извличането  и разтворения  
отток  — ако е необходимо  изследване  на десорбцията , се 
препоръчва  да се извърши  описаното  по-долу  изследване  
върху  същата  система , за която  е бил възможно  точно  
определяне  на К d при предишния  експеримент  за кинетика  на 
адсорбцията . 
Подобно  на проучването  на кинетиката  на адсорбция  има две 
възможности  за действие  при проучването  на кинетиката  на 
десорбция : а) паралелен  метод  и б) сериен  метод . Изборът  на 
методология , която  ще се следва  се оставя  на тези, които  
извършват  експеримента  и ще е нужно  да вземат  предвид  и 
наличната  лабораторна  техника  и ресурси . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1208
 
а) Паралелен  метод : за всеки  вид почва , който  е избран  за 
изследването  за десорбция  се приготвят  проби  със същото  
съотношение  почва /разтвор , в такова  количество  каквото  е 
нужно  за изследване  на десорбната  кинетика  през отделните  
интервали  от време . За предпочитане  се използват  същите  
интервали  от време  като при експеримента  за кинетика  на 
адсорбцията ; обаче , с цел системата  да достигне  равновесие  
на десорбция , когато  е подходящо , може  да се увеличи  
общото  време . При всеки  експеримент  (един  вид почва  и 
един  разтвор ) се извършва  пускане  на празен  ход. Той се 
състои  от почва  и 0,01 М СаСl 2 разтвор  без тестваното  
вещество  и тегло  и съответно  обем , идентични  на тези от 
експеримента . Като  контролна  проба  тестваното  вещество  в 
разтвор  0,01 М СаСl 2 се подлага  на същата  процедура  на 
тестване . Всички  смеси  на почвата  с разтвора  се разбъркват , 
докато  не се постигне  равновесие  на адсорбцията  (както  е 
определено  по-горе във фаза  2). Тогава  фазите  се разделят  
чрез центрофуга  и, ако е възможно , се отстранява  водната  
фаза . Обемът  на отстранения  разтвор  се замества  с равно  
количество  0,01 М СаСl 2 без тестваното  вещество  и новата  
смес  се разбърква  отново . Водната  фаза  от първата  тръба  се 
възстановява , колкото  е възможно  и се изчислява  след  
например  2 часа, втората  тръба  — след  4 часа, третата  
тръба  — след  6 часа и т.н., докато  се постигне  равновесие  
на десорбцията . 
б) Сериен  метод : след  експеримента  за кинетика  на 
адсорбцията , сместа  се центрофугира  и водната  фаза  се 
отстранява  доколкото  е възможно . Обемът  на отстранения  
разтвор  се замества  с равно  количество  0,01 М СаСl 2 без 
тестваното  вещество . Новата  смес  се разбърква  отново  
докато  се получи  равновесие  на десорбцият . През  това 
време  на определени  интервали  от време  сместа  се 
центрофугира  за да се разделят  фазите . Малка  аликвотна  
част на водната  фаза  незабавно  се анализира  за тестваното  
вещество ; след  това експеримента  продължава  с оригин­  
алната  смес . Препоръчва  се общата  маса  на взетата  
аликвотна  част да не надвишава  1 % от общото  количество . 
Същото  количество  пресен  разтвор  0,01 М СаСl 2 се прибавя  
към сместа  за да се поддържа  отношението  почва /разтвор  и 
разбъркването  продължава  до следващия  интервал  от време . 
Процентът  десорбция  се изчислява  за всяко  определено  време  
(ðD t i Þ) и/или за интервал  от време  (ðD Δt i Þ) (В съответствие  с 
нуждите  на изследването ) и се изобразява  графично  противо­  
положно  на времето . Коефициентът  на десорбция  К des при 
равновесие  също  се изчислява . Всички  приложими  уравнения  
и принципи  на схемата  са дадени  в раздела  за данни  и 
отчитане  и приложение  5. 
Резултати  от експеримента  за кинетика  на десорбция  
Общи  схеми  на процентите  на десорбция  D t i и адсорбция  A t i противоположно  на времето  позволяват  изчисляването  на обрат­  
имостта  на процеса  на адсорбция . Ако равновесието  на 
десорбция  се постигне  дори  при двойно  време  от постигане  
равновесието  на адсорбция  и общата  десорбция  е повече  от 
75 % от адсорбираното  количество , се счита , че адсорбцията  е 
обратима . 
1.9.2.5.3. И з о т е р м и н а д е с о р б ц и я т а 
Изотермите  на десорбция  на Фройндлих  се определят  върху  
почвите , използвани  при експериментите  за определяне  на 
изотермите  на адсорбция . Тестът  се извършва , както  е описано  
в раздел  кинетика  на десорбцията , с единствената  разлика , че 
водната  фаза  се анализира  веднъж  при постигната  равновесие  на 
десорбция . Количеството  десорбирано  тествано  вещество  се 
изчислява . Съдържанието  тествано  вещество , останало  
адсорбирано  върху  почвата  при равновесие  на десорбция , се 
представя  графично  като функция  на концентрацията  на пост­  
игнато  равновесие  на тестваното  вещество  в разтвора  (вж. 
„Данни  и отчитане “ и приложение  5). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1209
 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Аналитичните  данни  се представят  в таблична  форма  (вж. 
приложение  6). Отделните  измервания  и изчислените  средни  
стойности  се дадени . Графичното  представяне  на изотермите  на 
адсорбция  са доказани . Изчисленията  се правят , както  е описано  
по-долу . 
За целите  на теста  се счита , че тегло  от 1 cm  3 от водния  разтвор  
е 1 g. Съотношението  почва /разтвор  може  да се изразява  в 
единици  от w/w или w/vol със същите  цифри . 
2.1. АДСОРБЦИЯ  
Адсорбцията  A t i се определя  като процент  от адсорбираното  
вещество  върху  почвата  по отношение  на представеното  
количество  в началото  на теста , при условията  за извършване  
на теста . Ако тестваното  вещество  е устойчиво  и не се 
адсорбира  значително  върху  стените  на контейнера , A  t i се 
изчислява  при определено  време  t i съгласно  уравнението : 
A t i ¼ m p ads ðt i Þ · 100 
m 0 ð%Þ (3) 
където : 
A t i = процентът  на адсорбция  при определено  време  t i ( %);  
m s ads ðt i Þ = масата  тествано  вещество , адсорбирано  върху  почвата  
при време  ti (μg); 
m 0 = масата  тествано  вещество  в тръбата  при началото  на 
теста  (μg). 
Подробна  информация  за това как да се изчислява  процента  
адсорбция  A  t i за паралелния  и серийния  метод  е дадена  в 
приложение  5. 
Коефициентът  на разпределяне  К d е съотношение  между  
съдържанието  на вещество  във почвата  и концентрацията  на 
масата  на веществото  във водния  разтвор , при условията  на 
извършване  на теста , когато  е постигнато  равновесие  на адсорбция . 
K d ¼ C p ads ðeqÞ 
C vod ads ðeqÞ ¼ m p ads ðeqÞ 
m vod ads ðeqÞ · V 0 
m půda (cm  3 · g -1 ) (4) 
където : 
C s ads ðeqÞ = съдържание  на адсробираното  вещество  върху  
почвата  при равновесие  на адсорбция  (μg g  -1 ); 
C aq ads ðeqÞ = концентрация  на масата  на веществото  във водна  
фаза  при равновесие  на адсорбция  (μg g  -3 ). Тази  
концентрация  се определя  аналитично  като се 
вземат  предвид  получените  по време  на 
пускането  на празен  ход стойности ; 
m s ads ðeqÞ = маса  на веществото  адсорбирано  върху  почвата  
при равновесие  на адсорбция  (μg); 
m aq ads ðeqÞ = маса  на веществото  в разтвора  при равновесие  на 
адсорбция  (μg); 
m SOil = количество  почва , изразено  като суха  маса  
почва  (g); 
V 0 = първоначален  обем  на водната  фаза  в контакт  с 
почвата  (cm  3 ). 
Отношението  между  A eq и К d е дадено  чрез: 
K d ¼ A eq 
100 Ä A eq · V 0 
m půda (cm  3 · g -1 ) (5) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1210
 
където : 
A eq = процентът  адсорбция  при равновесие  на адсорбция  %. 
Коефициентът  на нормализирана  адсорбция  на органичния  
въглерод  К ос свързва  коефициента  на разпределение  К d към 
съдържанието  на органичен  въглерод  на пробата  от почва : 
K ou ¼ K  d · 100 
%ou  (cm  3 ·g -1 ) (6) 
където : 
%ОС = процентът  на органичен  въглерод  в пробата  от 
почва  (g g  -1 ). 
K Oc коефициентът  представлява  отделна  стойност , която  
характеризира  разделянето  главно  на неполярните  химикали  
между  органичния  въглерод  в почвата  или седименти  и вода . 
Адсорбцията  на тези химикали  се намира  в съотношение  с орга­  
ничното  съдържание  на сорбиращи  частици  (7); така K  Oc 
стойност  зависи  от специфичните  характеристики  на влажните  
частици , които  значително  се отличават  със сорбционна  
способност  заради  разликите  при произхода , генезиса  и т.н. 
2.1.1.  Изотерми  на адсорбция  
Уравненията  на Фройндлих  изотермите  на адсорбция  на 
свързват  адсорбираното  тествано  вещество  върху  почвата  с 
концентрацията  тествано  вещество  в разтвора  при равновесие  
на адсорбция  (уравнение  8). 
Данните  се обработват  като при раздела  „Адсорбция “ и, за всяка  
епруветка , се изчислява  съдържанието  на адсорбирано  тествано  
вещество  върху  почвата  след  теста  за адсорбция  (C s ads ðeqÞ, 
другаде  обозначени  като х/m). Приема  се, че равновесието  е 
постигнато  и че C  s ads ðeqÞ представлява  стойността  на 
равновесие : 
C p ads ðeqÞ ¼ m p ads ðeqÞ 
m půda ¼ C 0 Ä C vod ads ðeqÞ h i
: V 0 
m půda (μg · g -1 ) (7) 
Уравненията  на Фройндлих  изотермите  на адсорбция  са 
показани  в: 
C p ads ðeqÞ ¼ K F ads Ö C vod ads ðeqÞ 1=n (μg · g -1 ) (8) 
или в линейна  форма : 
logC  p ads ðeqÞ ¼ logK  F ads þ 1=n·logC  vod ads ðeqÞ (9) 
където : 
K F ads = коефициент  на адсорбция  на Фройнндлих ; 
неговата  геометрична  характеристика  е cm  3 g -1 ' само  
ако 1/n = 1; във всички  други  случаи  наклонената  1/n 
се въвежда  в геометричната  характеристика  на K F ads 
(μg 1-1/n (cm  3 ) 1/n · g -1 ); 
n = константа  на регресията ; 1/n основно  между  0,7 – 1,0, 
което  показва , че данните  за сорбцията  са често  по- 
скоро  нелинейни . 
Уравнения  (8) и(9) се изобразени  в графика  и стойностите  K F ads 
и 1/n се изчисляват  чрез регресионен  анализ , като се използва  
уравнение  9. Коефициентът  на корелация  r 2 на логаритмичното  
уравнение  също  се изчислява . Пример  на такова  графично  
изображение  е дадено  във фигура  2. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1211
 
2.1.2.  Баланс  на масата  
Балансът  на масата  (БМ) се определя  като процент  вещество , 
което  може  да бъде  аналитично  възстановено  след  теста  за 
адсорбция  противоположно  на номиналното  количество  
вещество  в началото  на теста . 
Обработването  на данните  ще е различно , ако разтворът  напълно  
се смеси  с водата . В този случай  обработката  на данните , 
описана  в „десорбция “ може  да се прилага , за да се определи  
количеството  вещество  възстановено  чрез извличане  на разт­  
ворителя . Ако разтворителят  е по-малко  смесим  с водата , 
трябва  да се направят  изчисления  на възстановеното  количество . 
Балансът  на масата  (МБ) за адсорбция  се изчислява , както  
следва : приема  се, че периодът  (m  Е ) отговаря  на сумата  от 
масите  на тестваното  вещество , извлечено  от почвата  и 
повърхността  на съда  за тестване  с органичен  разтворител : 
MB ¼ V rec ·C vod ads ðeqÞ þ m E Ê Ì  
·100 
V 0 ·C 0 ð%Þ (10) 
където : 
MB = балансът  на масата  ( %)  
m Е = общата  маса  тестваното  вещество , извлечено  от почвата  
и повърхността  на съда  за тестване  в два хода  (μg); 
C 0 = концентрацията  първоначална  маса  на тестваното  
вещество  в контакт  с почвата  (μg cm  -3 ); 
V rec = обем  на плаващите  отгоре  частици , възстановени  след  
постигнато  равновесие  на адсорбция  (cm  -3 ). 
2.2. ДЕСОРБЦИЯ  
Десорбцията  (Д) се определя  като процент  тествано  вещество , 
което  е десорбирано , отнасящо  се към количеството  вещество  
предварително  адсорбирано  при условията  на извършване  на 
теста : 
D t i ¼ m vod des ðt i Þ 
m p ads ðeqÞ · 100ð%Þ (11) 
където : 
D t i = процент  десорбция  при определено  време  t i ( %);  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1212
 
m aq des ðt i Þ = маса  на десорбирано  вещество  от почвата  при 
определено  време  t i (μg); 
m s ads ðeqÞ = маса  на веществото , адсорбирано  върху  почвата  
при равновесие  на адсорбция  (μg). 
Подробна  информация  за това как да се изчислява  процент cj 
десорбция  D  t i за паралелния  и серийния  метод  е дадена  в 
приложение  5. 
Коефициентът  на очевидната  десорбция  K des е, при условията  за 
извършване  на теста , съотношение  между  съдържанието  на 
вещество  оставащо  в почвата  и концентрацията  на масата  на 
десорбираното  вещество  във водния  разтвор , когато  е пост­  
игнато  равновесие  на десорбция : 
K des ¼ m p ads ðeqÞ Ä m vod des ðeqÞ 
m vod des ðeqÞ V T 
m půda (cm  3 ·g -1 ) (12) 
където : 
K des = коефициент  на десорбция  (cm  3 g -1 ); 
m aq des ðeqÞ = маса  на десорбирано  от почвата  при равновесие  на 
десорбция  (μg); 
V T = общ обем  на водната  фаза  в контакт  с почната  по 
време  на изпитване  кинетиката  на десорбция  
(cm  3 ). 
Ръководство  за изчисляване  на m aq des ðeqÞ е дадено  в допълнение  
5 в раздел  „Десорбция “. 
Забележка : 
Ако изпитването  на адсорбцията , което  е предшествало , е било  
извършено  с паралелен  метод , се счита , че V T В уравнение  12 е 
равно  на V 0 . 
2.2.1.  Изотерми  на десорбция  
Уравненията  на Фройндлих  за изотермите  на десорбция  свързват  
съдържанието  на тестваното  вещество , адсорбирано  върху  
почвата  с концентрацията  тествано  вещество  в разтвора  при 
равновесие  на десорбция  (уравнение  16).  
За всяка  епруветка  съдържанието  на тестваното  вещество  
адсорбирано  върху  почвата  при равновесие  на десорбция  се 
изчислява , както  следва : 
C p des ðeqÞ ¼ m p ads ðeqÞ Ä m vod des ðeqÞ 
m půda (μg · g -1 ) (13) 
m aq des ðeqÞ се определя  като 
m vod des ðeqÞ ¼ m  m des ðeqÞ · V 0 
V r F Ä m  vod A (μg) (14) 
където : 
C s ads ðeqÞ = съдържание  на адсорбираното  вещество  върху  
почвата  при равновесие  на десорбция  (μg g  -1 ); 
m m ads ðeqÞ = масата  вещество  определено  аналитично  във 
водната  фаза  при равновесие  на десорбция  (μg); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1213
 
m aq A = масата  тествано  вещество  останало  от равнов­  
есието  на адсорбция  заради  непълно  количествено  
заместване  (μg); 
m aq ads ðeqÞ = масата  вещество  в разтвора  при равновесие  на 
адсорбция  (μg); 
m vod A ¼ m  vod ads ðeqÞ · V 0 Ä V R 
V 0 Í Î  (15) 
V r F = обем  на количеството  разтвор , взето  от епруветката  за 
измерване  на тестваното  вещество  при равновесие  на 
десорбция  (cm  3 ); 
V R = количеството  плаващи  частици , отстранени  от 
епруветката  след  постигане  на равновесие  на адсорбция  
и са заместени  със същия  обем  от 0,01 M СаСl 2 (cm  3 ). 
Уравненията  на Фройндлих  за изотермите  на адсорбция  са 
показани  в 16: 
C p des ðeqÞ ¼ K  F des · C vod des ðeqÞ 1=n (μg · g -1 ) (16) 
или в линейна  форма  
log C  s des ðeqÞ ¼ log K  F des þ 1=n · log C  aq des ðeqÞ (17) 
където : 
C aq des ðeqÞ = коефициент  на десорбция  на Фройндлих ; 
n = константа  на регресията ; 
C aq des ðeqÞ 
= концентрация  на масата  на веществото  във водна  
фаза  при равновесие  на десорбция  (μg g  -3 ). 
Уравнения  16 и 17 са изобразени  графично  и стойностите  K F des и 
1/n се изчисляват  чрез регресионен  анализ , използвайки  
уравнение  17. 
Забележка : 
Ако Фройндлих  показатели  за адсорбция  и десорбция  1/n са 
равни  на 1, Фройндлих  закрепващи  константи  за адсорбция  и 
десорбция  (K F ads и K  F des ) ще бъдат  равни  съответно  на 
константите  на равновесие  на адсорбция  и десорбция  (К d и 
K des ) и графичното  изображение  на C s vs C  aq ще е линейно . 
Ако показателите  не са равни  на 1, то графичното  изображение  
C s vs C  aq няма  да бъде  линейно  и константите  за адсорбция  и 
десорбция  ще варират  през изотермите . 
2.2.2.  Отчитане  на теста  
Отчитането  на теста  включва  следната  информация : 
— пълна  идентификация  на използваните  проби  от почва  
включва : 
— географско  положение  на площадката , от където  са взети  
(географска  ширина  и дължина ); 
— дата на взимането  на пробите ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1214
 
— използвани  образци  (т.е. земеделски  почви , гори  и т.н.); 
— дълбочина  на взимането  на пробите ; 
— съдържание  на пясък , утайка , глина ; 
— стойности  на рН (в 0,01 M СаСl 2 ); 
— съдържание  на органичен  въглерод ; 
— съдържание  на органични  частици ; 
— съдържание  на амоняк , 
— отношение  C/N;  
— капацитет  на обмяната  на катиони  (mmol/kg);  
— всякаква  информация , която  се отнася  до събирането  и 
съхраняването  на пробите  от почви ; 
— където  е уместно , всякаква  информация  за тълкуването  на 
адсорбцията /десорбцията  на тестваното  вещество ; 
— указания  за методите , използвани  при определяне  на всеки  
параметър ; 
— информация  за тестваното  вещество , ако е уместно ; 
— температура  на експеримента ; 
— условия  на центрофугиране ; 
— аналитична  процедура , използвана  за анализ  на тестваното  
вещество ; 
— оправдаване  използването  на разтварящ  фактор  за подг­  
отовка  на основния  разтвор  на тестваното  вещество ; 
— обяснения  за направени  поправки  при изчисленията , ако са 
релевантни ; 
— данни  съгласно  формуляра  (приложение  6) и графично  
представяне ; 
— цялата  информация  и полезни  наблюдения  за тълкуване  на 
резултатите  от теста . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) Kukowski H. and Brümmer G., (1987). Investigations on the 
Adsorption and Desorption of Selected Chemicals in Soils. 
UBA Report 106 02045. Part II.  
(2) Fränzle O., Kuhnt G. and Vetter L., (1987) Selection of Repre ­
sentative Soils in the EC-Territory. UBA Report 106 02 
045. Part I.  
(3) Kuhnt G. and Muntau H. (Eds.) EURO-Soils: Identification, 
Collection, Treatment, Characterisation. Special Publication 
No 1.94.60, Joint Research Centre. European Commission, ISPRA, December 1994.
 
(4) OECD Test Guidelines Programme, Final Report of the OECD 
Workshop on Selection of Soils/Sediments, Belgirate, Italy, 18—20 January 1995 (June 1995).
 
(5) US Environment Protection Agency: Pesticide Assessment 
Guidelines, Subdivision N, Chemistry: Environmental Fate, 
Series 163-1, Leaching and Adsorption/Desorption Studies, 
Addendum 6 on Data Reporting, 540/09-88-096, Date: 1/1988.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1215
 
(6) US Environment Protection Agency: Prevention, Pesticides and 
Toxic Substances, OPPTS Harmonized Test Guidelines Series 
835-Fate, Transport and Transformation Test Guidelines OPPTS No: 835.1220 Sediment and Soil Adsorption/De ­
sorption Isotherm. EPA No: 712-C-96-048, April 1996.
 
(7) ASTM Standards, E 1195-85, Standard Test Method for Deter ­
mining a Sorption Constant (K  oc ) for an Organic Chemical in 
Soil and Sediments.  
(8) Agriculture Canada: Environmental Chemistry and Fate. 
Guidelines for registration of pesticides in Canada, 15 July 1987.
 
(9) Netherlands Commission Registration Pesticides (1995): 
Application for registration of a pesticide. Section G. 
Behaviour of the product and its metabolites in soil, water and air.
 
(10) Danish National Agency of Environmental Protection (October 
1988): Criteria for registration of pesticides as especially 
dangerous to health or especially harmful to the environment.  
(11) BB A (1990), Guidelines for the Official Testing of Plant 
Protection Products, Biological Research Centre for Agri ­
culture and Forestry, Braunschweig, Germany.  
(12) Calvet R., (1989), „Evaluation of adsorption coefficients and 
the prediction of the mobilities of pesticides in soils“, in 
Methodological Aspects of the Study of Pesticide Behaviour 
in Soil (ed. P. Jamet), INRA, Paris, (Review).  
(13) Calvet R., (1980), „Adsorption-Desorption Phenomena“ in 
Interactions between herbicides and the soil. (R. J. Hance ed.), Academic Press, London, pp. 83—122.
 
(14) Hasset J. J., and Banwart W.L., (1989), „The sorption of 
nonpolar organics by soils and sediments“ in Reactions and 
Movement of Organic Chemicals in Soils. Soil Science Society of America (S.S.S.A), Special Publication no. 22, pp. 31—44.
 
(15) van Genuchten M. Th., Davidson J. M., and Wierenga P. J., 
(1974), „An evaluation of kinetic and equilibrium equations for 
the prediction of pesticide movement through porous media“. 
Soil Sci. Soc. Am. Proa, Vol. 38(1), pp. 29—35.  
(16) McCall P. J., Laskowski D. A., Swann R. L., and Dishburger 
H. J., (1981), „Measurement of sorption coefficients of organic chemicals and their use, in environmental fate analysis“, in 
Test Protocols for Environmental Fate and Movement of Toxi ­
cants. Proceedings of AOAC Symposium, AOAC, Washington DC.
 
(17) Lambert S. M., Porter P. E., and Schieferrstein R. H., (1965), 
„Movement and sorption of chemicals applied to the soil“. 
Weeds, 13, pp. 185—190.  
(18) Rhodes R. C, Belasco I. J., and Pease H. L., (1970) „Deter ­
mination of mobility and adsorption of agrochemicals in soils“. J.Agric.Food Chem., 18, pp. 524—528.
 
(19) Russell M. H., (1995), „Recommended approaches to assess 
pesticide mobility in soil“ in Environmental Behavior of 
Agrochemicals (ed. T. R. Roberts and P. C. Kearney). John 
Wiley & Sons Ltd.  
(20) Esser H. O., Hemingway R. J., Klein W., Sharp D. B., Vonk J. 
W. and Holland P. T., (1988), „Recommended approach to the evaluation of the environmental behavior of pesticides“, 
IUPAC Reports on Pesticides (24). Pure Appl. Chem., 60, 
pp. 901—932.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1216
 
(21) Guth J. A., Burkhard N., and D. O. Eberle, (1976), „Experi ­
mental models for studying the persistence of pesticides in 
soils“. Proc. BCPC Symposium: Persistence of Insecticides and Herbicides, pp. 137—157, BCPC, Surrey, UK.
 
(22) Furminge C. G. L., and Osgerby J. M., (1967), „Persistence of 
herbicides in soil“. J. Sci. Fd Agric, 18, pp. 269—273.  
(23) Burkhard N., and Guth J. A., (1981), „Chemical hydrolysis of 
2-Chloro-4,6-bis(alkylamino)-1,3,5-triazine herbicides and their breakdown in soil under the influence of adsorption“. Pestic. 
Sci. 12, pp. 45—52.
 
(24) Guth J. A., Gerber H. R., and Schlaepfer T., (1977), „Effect of 
adsorption, movement and persistence on the biological avai ­
lability of soil-applied pesticides“. Proc. Br. Crop Prot. Conf., 3, pp. 961—971.
 
(25) Osgerby J. M., (1973), „Process affecting herbicide action in 
soil“. Pestic. Sci., 4, pp. 247—258.  
(26) Guth J. A., (1972), „Adsorptions- und Einwascheverhalten von 
Pflanzenschutzmitteln in Böden“. Schr. Reihe Ver. Wass. 
-Boden-Lufthyg. Berlin-Dahlem, Heft 37, pp. 143—154.  
(27) Hamaker J. W., (1975), „The interpretation of soil leaching 
experiments“, in Environmental Dynamics of Pesticides (eds R. Haque and V.H. freed), pp. 135—172, Plenum Press, NY.
 
(28) Helling C. S., (1971), „Pesticide mobility in soils“. Soil Sci. 
Soc. Amer. Proc. 35, pp. 732—210.  
(29) Hamaker J. W., (1972), „Diffusion and volatilization“ in 
Organic chemicals in the soil environment (C.A.I. Goring 
and J. W. Hamaker eds), Vol. I, pp. 49—143.  
(30) Burkhard N. and Guth J. A., (1981), „Rate of volatilisation of 
pesticides from soil surfaces; Comparison of calculated results 
with those determined in a laboratory model system“. Pestic. Sci. 12, pp. 37—44.
 
(31) Cohen S. Z., Creeger S. M., Carsel R.F., and Enfield C.G., 
(1984), „Potential pesticide contamination of groundwater from agricultural uses“, in Treatment and Disposal of Pesticide 
Wastes, pp. 297—325, Acs Symp. Ser. 259, American 
Chemical Society, Washington, DC.
 
(32) Gustafson D. I., (1989), „Groundwater ubiquity score: a simple 
method for assessing pesticide leachability“. J. Environ. Toxic. Chem., 8(4), pp. 339—357.
 
(33) Leistra M., and Dekkers W. A., (1976). „Computed effects of 
adsorption kinetics on pesticide movement in soils“. J. of Soil 
Sci., 28, pp. 340—350.  
(34) Bromilov R. H., and Leistra M., (1980), „Measured and 
simulated behavior of aldicarb and its oxydation products in fallow soils“. Pest. Sci., 11, pp. 389—395.
 
(35) Green R. E., and Karickoff S. W., (1990), „Sorption estimates 
for modeling“, in Pesticides in the Soil Environment: Process, Impacts and Modeling (ed. H.H. Cheng). Soil Sci. Soc. Am., 
Book Series no. 2, pp. 80—101,
 
(36) Lambert S. M., (1967), „Functional relationship between 
sorption in soil and chemical structure“. J. Agri. Food 
Chem., 15, pp. 572—576.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1217
 
(37) Hance R. J., (1969), „An empirical relationship between 
chemical structure and the sorption of some herbicides by 
soils“. J. Agri. Food Chem., 17, pp. 667—668.  
(38) Briggs G. G. (1969), „Molecular structure of herbicides and 
their sorption by soils“. Nature, 223, 1288.  
(39) Briggs G. G. (1981). „Theoretical and experimental relati ­
onships between soil adsorption, octanol-water partition coef ­
ficients, water solubilities, bioconcentration factors, and the parachor“. J. Agric. Food Chem., 29, pp. 1050—1059.
 
(40) Sabljic A., (1984), „Predictions of the nature and strength of 
soil sorption of organic polutance by molecular topology“. J. 
Agric. Food Chem., 32, pp. 243—246.  
(41) Bailey G. W., and White J. L., (1970), „Factors influencing the 
adsorption, desorption, and movement of pesticides in soil“. Residue Rev., 32, pp. 29—92.
 
(42) Bailey G. W., J. L. White and Y. Rothberg., (1968), 
„Adsorption of organic herbicides by montomorillonite: Role of pH and chemical character of adsorbate“. Soil Sci. Soc. 
Amer. Proc. 32: pp. 222—234.
 
(43) Karickhoff S. W., (1981), „Semi-empirical estimation of 
sorption of hydrophobic pollutants on natural sediments and soils“. Chemosphere 10, pp. 833—846.
 
(44) Paya-Perez A., Riaz M. and Larsen B., (1989), „Soil Sorption 
of 6 Chlorobenzenes and 20 PCB Congeners“. Environ. Toxicol. Safety 21, pp. 1—17.
 
(45) Hamaker J. W., and Thompson J. M., (1972), „Adsorption in 
organic chemicals“ in Organic Chemicals in the Soil Envi ­
ronment (Goring C.A.I. and Hamaker J.W., eds), Vol I and II, Marcel Dekker, Inc., New York, NY, 1972, pp. 49—143.
 
(46) Deli J., and Warren G. F., 1971, „Adsorption, desorption and 
leaching of diphenamid in soils“. Weed Sci. 19: pp. 67—69.  
(47) Chu-Huang Wu, Buehring N., Davinson J. M. and Santelmann, 
(1975), „Napropamide Adsorption, desorption and Movement in soils“. Weed Science, Vol. 23, pp. 454—57.
 
(48) Haues M. H. B., Stacey M., and Thompson J. M., (1968), 
„Adsorption of s-triazine herbicides by soil organic prepara ­
tions“ in Isotopes and Radiation in Soil Organic Studies, p.75, International. Atomic Energy Agency, Vienna.
 
(49) Pionke H. B., and Deangelis R. J., (1980), „Methods for distri ­
buting pesticide loss in field run-off between the solution and adsorbed phase“, CREAMS, in A Field Scale Model for 
Chemicals, Run-off and Erosion from Agricultural Mana ­
gement Systems, Chapter 19, Vol. III: Supporting Documen ­
tation, USDA Conservation Research report.
 
(50) ISO Standard Compendium Environment: Soil Quality — 
General aspects; chemical and physical methods of analysis; 
biological methods of analysis. First Edition (1994).  
(51) Scheffer F., and Schachtschabel, Lehrbuch der Bodenkunde, F. 
Enke Verlag, Stuttgart (1982), 11  th edition.  
(52) Black, Evans D. D., White J. L., Ensminger L. E., and Clark F. 
E., eds. „Methods of Soil Analysis“, Vol 1 and 2, American 
Society of Agronomy, Madison, WI, 1982.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1218
 
(53) ISO/DIS 10381-1 Soil Quality — Sampling — Part 1: 
Guidance on the design of sampling programmes.  
(54) ISO/DIS 10381-2 Soil Quality — Sampling — Part 2: 
Guidance on sampling techniques.  
(55) ISO/DIS 10381-3 Soil Quality — Sampling — Part 3: 
Guidance on safety of sampling.  
(56) ISO/DIS 10381-4 Soil Quality — Sampling — Part 4: 
Guidance on the investigation of natural and cultivated soils.  
(57) ISO/DIS 10381-5 Soil Quality — Sampling — Part 5: 
Guidance on the investigation of soil contamination of urban and industrial sites.
 
(58) ISO 10381-6, 1993: Soil Quality — Sampling — Part 6: 
Guidance on the collection, handling and storage of soil for 
the assessment of aerobic microbial processes in the laboratory.  
(59) Green R. E., and Yamane V. K., (1970), „Precision in 
pesticide adsorption measurements“. Soil Sci. Am. Proa, 34, 
pp. 353—354.  
(60) Grover R., and Hance R. J. (1970), „Effect of ratio of soil to 
water on adsorption of linuron and atrazine“. Soil Sci., pp. 109—138.
 
(61) Boesten, J. J. T. I, „Influence of soil/liquid ratio on the expe ­
rimental error of sorption coefficients in pesticide/soil system“. 
Pest. Sci. 1990, 30, pp. 31—41.  
(62) Boesten, J. J. T. I. „Influence of soil/liquid ratio on the expe ­
rimental error of sorption coefficients in relation to OECD 
guideline 106“. Proceedings of 5  th international workshop on 
environmental behaviour of pesticides and regulatory aspects, Brussels, 26—29 April 1994.
 
(63) Bastide J., Cantier J. M., et Coste C, (1980), „Comportement 
de substances herbicides dans le sol en fonction de leur 
structure chimique“. Weed Res. 21, pp. 227—231.  
(64) Brown D. S., and Flagg E. W., (1981), „Empirical prediction 
of organic pollutants sorption in natural sediments“. J. Envi ­
ron.Qual., 10(3), pp. 382—386.  
(65) Chiou C. T., Porter P. E., and Schmedding D. W., (1983), 
„Partition equilibria of non-ionic organic compounds between 
soil organic matter and water“. Environ. Sci. Technol, 17(4), 
pp. 227—231.  
(66) Gerstl Z., and Mingelgrin U., (1984), „Sorption of organic 
substances by soils and sediments“. J. Environm. Sci. Health, B19 (3), pp. 297—312.
 
(67) Vowles P. D., and Mantoura R. F. C, (1987), „Sediment-water 
partition coefficient and CLIP retention factors of aromatic hydrocarbons“. Chemosphere, 16(1), pp. 109—116.
 
(68) Lyman W. J., Reehl W. F. and Rosenblatt D. H. (1990). 
Handbook of Chemical Property Estimation Methods. Environ ­
mental Behaviour of Organic Compounds. American Chemical Society, Washington DC.
 
(69) Keniga E. E., and Goring, C. A. I. (1980). „Relationship 
between water solubility, soil sorption, octanol-water parti ­
tioning and concentration of chemicals in the biota“ in 
Aquatic Toxicology (eds J.G. Eaton, et al.), pp.78—115, 
ASTM STP 707, Philadelphia.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1219
 
(70) Chiou C. T., Peters L. J., and Freed V. H., (1979), „A physical 
concept of soil-water equilibria for non-ionic organic 
compounds“. Science, Vol. 206, pp. 831—832.  
(71) Hassett J. J., Banwart W. I., Wood S. G., and Means J. C, 
(1981), „Sorption of/-Naphtol: implications concerning the limits of hydrophobic sorption“. Soil Sci. Soc. Am. J. 45, 
pp. 38—42.
 
(72) Karickhoff S. W., (1981), „Semi-empirical estimation of 
sorption of hydrophobic pollutants on natural sediments and soils“. Chemosphere, Vol. 10(8), pp. 833—846.
 
(73) Moreale A., van Bladel R., (1981), „Adsorption de 13 
herbicides et insecticides par le sol. Relation solubilité-reacti ­
vité“. Revue de l'Agric., 34 (4), pp. 319—322.  
(74) Müller M., Kördel W. (1996), „Comparison of screening 
methods for the determination/estimation of adsorption coeffi ­
cients on soil“. Chemosphere, 32(12), pp. 2493—2504.  
(75) Kördel W., Kotthoff G., Müller M. (1995), „HPLC — 
screening method for the determination of the adsorption coef ­
ficient on soil – results of a ring test“. Chemosphere 30 (7), pp. 1373—1384.
 
(76) Kördel W., Stutte J., Kotthoff G. (1993), „HPLC – screening 
method for the determination of the adsorption coefficient on 
soil – comparison of different stationary phases“. Chemosphere 27 (12), pp. 2341—2352.
 
(77) Hance, R. J., (1967), „The Speed of Attainment of Sorption 
Equilibria in Some Systems Involving Herbicides“. Weed 
Research, Vol. 7, pp. 29—36.  
(78) Koskinen W. C, and Harper S. S., (1990), „The retention 
processes: mechanisms“ in Pesticides in the Soil Environment: Processes, Impacts and Modelling (ed. H.H. Cheng). Soil Sci. 
Soc. Am. Book Series, No. 2, Madison, Wisconsin.
 
(79) Cohen S. Z., Creeger S. M., Carsel R. F., and Enfield C. G. 
(1984), „Potential pesticide contamination of groundwater from agricultural uses“, in Treatment and Disposal of Pesticide Wastes, pp. 297—325, ACS Symp. Ser. 259, American 
Chemical Society, Washington, DC.
 
(80) Giles C. H., (1970), „Interpretation and use of sorption isot ­
herms“ in Sorption and Transport Processes in Soils. S.C.I. Monograph No. 37, pp. 14—32.
 
(81) Giles, C. H.; McEwan J. H.; Nakhwa, S.N. and Smith, D, 
(1960), „Studies in adsorption: XI. A system of classification 
of solution adsorption isotherms and its use in the diagnosis of adsorption mechanisms and in measurements of pesticides surface areas of soils“. J. Chem. Soc, pp. 3973—93.
 
(82) Calvet R., Terce M., and Arvien J. C, (1980), „Adsorption des 
pesticides par les sols et leurs constituants: 3. Caractéristiques 
générales de l'adsorption“. Ann. Agron. 31: pp. 239—251.  
(83) Bedbur E., (1996), „Anomalies in the Freundlich equation“, 
Proc. COST 66 Workshop, Pesticides in soil and the envi ­
ronment, 13—15 May 1996, Stratford-upon-Avon, UK.  
(84) Guth, J. A., (1985), „Adsorption/desorption“, in Joint Interna ­
tional Symposium, Physicochemical Properties and their Role in Environmental Hazard Assessment, July 1—3, Canterbury, UK.
 
(85) Soil Texture Classification (US and FAO systems): Weed 
Science, 33, Suppl. 1 (1985) and Soil Sci. Soc. Amer. Proc. 26:305 (1962).
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1220
 
Приложение  1 
Cxema ha tectbahe
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1221
 
Приложение  2 
ВЪЗДЕЙСТВИЕ  НА ТОЧНОСТТА  НА АНАЛИТИЧНИЯ  МЕТОД  И 
ИЗМЕНЕНИЕТО  ВЪРХУ  ТОЧНОСТТА  НА АДСОРБНИТЕ  
РЕЗУЛТАТИ  
От следващата  таблица  (84) става  ясно , че когато  разликата  между  първон­  
ачалната  маса  (m aq ads ðeqÞ = 110 μg) и маса  на равновесието  (m s ads ðeqÞ = 100 
μg) от тестваното  вещество  в разтвора  е много  малка , грешка  от 5 % в 
изчисляването  на концентрацията  на равновесие  ще доведе  до грешка  от 
50 % при изчисляване  на масата  на веществото , адсорбирано  в почвата  
(m s ads (eq)) и 52,4 % в изчисляването  на K d . 
Количество  почва  m  soil = 10 g 
Обем  на разтвора  v  0 = 100 cm  3 
m ads 
aq ðeqÞ 
(μg) C ads 
aq ðeqÞ 
(μg cm-  3 ) R m  ads 
s ðeqÞä 
(μg) C ads 
s ðeqÞä 
(μg g  -1 ) R ‡ K d * R  ‡ 
ЗА А = 9 %
 т 0 ¼ 100 μg иди 
С 0 ¼ 1:100 μg:cmÄ3 
100 1,000 Действи  
телна  
стойност  10 1,00 Действи  
телна  
стойност  1 
101 1,010 1 % 9 0,90 10 % 0,891 10,9 % 
105 1,050 5 % 5 0,50 50 % 0,476 52,4 % 
109 1,090 9 % 1 0,10 90 % 0,092 90,8 %  
ЗА А = 55 %
 т 0 ¼ 100 μg иди 
С 0 ¼ 1:100 μg:cmÄ3 
50,0 0,500 Действи  
телна  
стойност  60,0 6,00 Действи  
телна  
стойност  12,00 
50,5 0,505 1 % 59,5 5,95 0,8 % 11,78 1,8 % 
52,5 0,525 5 % 57,5 5,75 4,0 % 10,95 8,8 % 55,0 0,550 10 % 55,0 5,50 8,3 % 10,00 16,7 %  
ЗА А = 99 %
 т 0 ¼ 100 μg иди 
С 0 ¼ 1:100 μg:cmÄ3 
1,100 0,011 Действи  
телна  
стойност  108,9 10,89 Действи  
телна  
стойност  990 
1,111 0,01111 1 % 108,889 10,8889 0,01 % 980 1,0 % 
1,155 0,01155 5 % 108,845 10,8845 0,05 % 942 4,8 % 
1,21 0,0121 10 % 108,790 10,8790 0,10 % 899 9,2 %  
където : 
äm s ads ðeqÞ = следва  формула  
m s ads ðeqÞ = маса  на тестваното  вещество  в почвата  при равновесие  μg 
m aq ads ðeqÞ = маса  на тестваното  вещество  във водната  фаза  при равновесие  
μg 
C s ads ðeqÞ = съдържанието  на тестваното  вещество  в почвата  при 
равновесие  μg g  -1 
C aq ads ðeqÞ = съдържанието  на тестваното  вещество  във водната  фаза  при 
равновесие  μg cm-  3 
R = аналитична  грешка  при определяне  на m aq ads ðeqÞ 
R þ þ = грешка , получена  заради  аналитичната  грешка  R. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1222
 
Приложение  3 
ТЕХНИКА  НА ИЗЧИСЛЯВАНЕ  НА K D 
1. Техниките  на изчисляване  позволяват  предвиждане  на K D , основана  на 
корелацията  с например  P ow стойности  (12) (39) (63-68), данни  за 
разтворимост  във вода  (12) (19) (21) (39) (68-73) или данни  за 
полярността , получени  от HPLC при противоположната  фаза  (74-76). 
Както  е показано  в таблици  1 и 2, К oc и К om се изчисляват  чрез тези 
уравнения  и след  това индиректно  К d : 
K oc ¼ K  d · 100 
%oc ðcm 3 g Ä1 Þ K  om ¼ K d 
1; 724 · 100 
%oc ðcm 3 g Ä1 Þ 
2. Принципът  на тези корелации  се основава  на две предположения : 1. 
органичното  вещество  е това, което  основно  въздейства  върху  
адсорбцията  на веществото  и 2. включените  взаимодействия  са 
главно  не-полярни . Като  резултат  тези корелации : 1. не са или са 
само  в определена  степен  приложими  за полярните  вещества  и 2. не 
се прилагат  в случаите , когато  съдържанието  на органични  частици  на 
почвата  е много  малко  (12). Като  допълнение , въпреки  че се намират  
задоволителни  корелации  между  P ow и адсорбцията (19), същото  не 
може  да се каже  за отношенията  между  водната  разтворимост  и 
степента  на адсорбция  (19) (21); засега  проучванията  са много  проти­  
воречиви . 
3. Някои  примери  на корелации  между  разпространяването  на адсорбция  
и коефициент  на разделяне  на коефициент  на октанола , разтворим  във 
вода , както  и разтворимост  във вода  са дадени  в таблици  1 и 2, 
съответно . 
Таблица  1 
Примери  на корелации  между  коефициента  на разпространяване  на адсорбция  и коефициент  на 
октанола , разтворим  във вода ; за повече  примери  (12) (68)  
Вещества  Корелации  Автори  
Заместена  урея  log K  om = 0,69 + 0,52 log P  ow Briggs (1981) (39) 
Ароматично  хлорирана  log K  ос = - 0,779 + 0,904 log P  ow Chiou и аl. (1983) (65) 
Различни  пестициди  log K  om = 4,4 + 0,72 log P  ow Gerstl и Mingelgrin (1984) (66) 
Ароматни  въглеводороди  log K  ос = - 2,53 + 1,15 log P  ow Vowles и Mantoura (1987) (67)  
Таблица  2 
Примери  за корелации  между  коефициента  на разпространяване  на адсорбция  и разтворимостта  във 
вода ; за повече  примери  (68) (69)  
Съединения  Корелации  Автори  
Различни  пестициди  log К оm = 3,8 - 0,561 log S  w Gerstl a Mingelgrin (1984) (66) 
Алифатни , ароматично  
хлорирани  вещества  log K  om = (4,040 +/- 0,038) -(0,557 
± 0,012) log S  w Chiou и al. (1979) (70) 
α-нафтол  log K  oc = 4,273 - 0,686 log S  w Hasset et al. (1981) (71) 
Циклични , алифатни  аром­  
атични  вещества  log K  oc = - 1,405 - 0,921 log S  w - 
0,00953 (mp-25) Karickhoff (1981) (72) 
Различни  съединения  log K  om = 2,75 - 0,45 log S  w Moreale van Blade(1982) (73)  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1223
 
Приложение  4 
ИЗЧИСЛЕНИЯ  ЗА ОПРЕДЕЛЯНЕ  НА УСЛОВИЯТА , ПРИ  КОИТО  
СЕ ИЗВЪРШВА  ЦЕНТРОФУГА  
1. Времето  за центрофуга  е дадено  чрез следната  формула , вземайки  за 
дадено  
t ¼ 9 
2 η 
ω 2 rp 2 ρ s Ä ρ aq Ä Ö " #  
ln ðR b=R t Þ (1) 
За рационалните  цели  всички  параметри  са описани  в не-SI единици  
(g, cm).  
Където : 
ώ = скоростта  на ротация  (= 2 π rpm/60), rad s  -1 ; 
rpm = обороти  на минута ; 
η = вискозитет  на разтвора , g s  -1 cm -1 ; 
r p = радиус  на частицата , cm;  
p s = плътност  на почвата , g cm  -3 ; 
p aq = плътност  на разтвора , g cm  -3 ; 
R t = разстоянието  от центъра  на ротора  на центрофугата  до 
повърхността  на разтвора  в тръбата  за центрофуга , cm;  
R b = разстоянието  от центъра  на ротора  на центрофугата  до 
дъното  на разтвора  в тръбата  за центрофуга , cm;  
R b -R t = дължината  на сместа  почва /разтвор  в тръбата  за 
центрофуга , cm.  
В общата  практика  се удвоява  времето  за изчисляване , за да се 
гарантира  пълното  разделяне . 
2. Уравнение  1 може  да се опрости  по-нататък , ако се приеме , че 
вискозитета  (η) и плътността  ρ aq на разтвора  са равни  на вискозитета  
и плътността  на водата  при 25 o С; така η = 8,95 × 10  -3 g -1 cm -1 и ρ aq = 
1,0 g cm  -3 . 
След  това времето  за центрофуга  е дадено  в уравнение  (2): 
t ¼ 3; 7 
rpmð Þ  2 · r p 2 ρ p Ä 1 Ä Ö  ln R b 
R t (2) 
3. От уравнение  2 става  ясно , че двата  параметъра  са важни  при 
определянето  на условията , при които  трябва  да се извърши  центроф­  
угата , т.е. времето  (t) и скоростта  (rpm), за да се постигне  разделяне  на 
частиците  с определен  размер  (в нашия  случай  0,1 μm радиус ): 1. 
плътността  на почвата  и 2. дължината  на сместа  в тръбата  за 
центрофуга  (R  b -R t ), т.е. разстоянието , което  частиците  почва  
покриват  от повърхността  на разтвора  до дъното  на тръбата ; 
очевидно  определен  обем  дължина  на сместа  в тръбата  ще зависи  от 
радиуса  на тръбата , повдигнат  на втора  степен . 
4. Фигура  1 представя  променливостта  във времето  на центрофугиране  
(t) спрямо  скоростта  на центрофугиране  (rpm) за различната  плътност  
на почвите  (ρ s ) (фигура  1а) и различните  дължини  на сместа  в тръбите  
за центрофуга  (фигура  1a). От фигура  1а се вижда  въздействието  на 
плътността  на почвата ; например  за класическата  центрофуга  с 3 000 
rpm, времето  за центрофуга  е приблизително  240 min за 1,2 g cm 
плътност  на почвата , докато  само  50 min за 2,0 g cm  3 . По подобен  
начин  от фигура  1б за класическата  центрофуга  с 3 000 rpm, времето  
за центрофуга  е приблизително  50 min при дължина  на сместа  от 
10 cm и само  7 min при дължина  от 1cm. Обаче  е важно  да се 
намери  и оптималното  отношение  между  центрофугата , което  
изисква  възможно  по-малка  дължина  и лесно  боравене  за тези, които  
извършват  теста  при разделянето  на фазите  след  центрофугата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1224
 
5. Нещо  повече , когато  се определят  условията  за извършване  на 
експеримента  за разделяне  на фазите  почва /разтвор , е важно  да се 
разгледа  възможното  съществуване  на трета  „псевдофаза “ колоиди . 
Тези  частици  с големина  по-малка  от 0,2 μm могат  да окажат  важно  
въздействие  върху  целия  механизъм  на адсорбция  на веществото  в 
почвена  суспензия . Когато  центрофугата  се извършва , както  е 
описано  по-горе, колоидите  остават  във водната  фаза  и се подлагат  
на анализ  заедно  с водната  фаза . Така  се губи  информация  за тяхното  
въздействие . 
Ако извършващата  лаборатория  има техника  за ултрацентрофуга  или 
ултрафилтрация , адсорбцията /десорбция  на веществото  в почвата  
може  да се изследва  в по-голяма  дълбочина , включително  информация  
за адсорбцията  на веществото  върху  колоидите . В този случай , за да се 
разделят  трите  фази  почва , колоиди  и разтвор , се използва  апаратура  
за ултрацентрофуга  от 60 000 rpm/min или ултрафилтрация  с пропус­  
кливост  на филтъра  от 100 000 далтона . Протоколът , който  се води  по 
време  на теста , също  съответно  се изменя  с цел всичките  три фази  да 
се подложат  на анализ  на веществата . 
Фигура  1а
 
Променливост  на времето  за центрофуга  (t) противоположно  на скоростта  
на центрофуга  (rpm) за различната  плътност  на почвите  (ρ s ). R  t = 10 cm, 
R b -R t = 10 cm, η = 8,95 × 10  -3 g s -1 cm -1 и ρ aq = 1,0 g cm  -3 при 25 o C. 
Фигура  1б
 
Променливост  на времето  за центрофуга  (t) противоположно  на скоростта  
на центрофуга  (rpm) за различната  дължина  на сместа  в тръбата  за 
центрофуга  (R  b -R t ) = L; R  t = 10 cm, η = 8,95 × 10  -3 g s  -1 cm-  1 , 
ρ aq = 1,0 g cm  -3 при 25 o C и ρ s = 2,0 g cm  -3 . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1225
 
Приложение  5 
ИЗЧИСЛЯВАНЕ  НА АДСОРБЦИЯТА  А (%) И ДЕСОРБЦИЯ  D (%)  
Графиката  на времето  за извършване  на процедурата  е:
 
За всички  изчисления  се приема , че тестваното  вещество  е устойчиво  и не 
се адсорбира  значително  върху  стените  на контейнера . 
АДСОРБЦИЯ  А (А %) 
а) Паралелен  метод  
Процентът  адсорбция  се изчислява  за всяка  използвана  епруветка  (i) за 
определено  време  (t i ), в съответствие  с уравнението : ( 1 ) 
A t i ¼ m p ads ðt i Þ · 100 
m 0 (%) (1) 1 
Периодът  може  да се изчисли , както  следва : 
m 0 = C  0 · V 0 (μg) (2)  
m p ads ðt i Þ ¼ m  0 Ä C vod ads ðt i Þ · V 0 (μg) (3) 
където : 
A t i = процента  адсорбция  (%) при определено  време  t i ; 
m p ads ðt i Þ = маса  на тестваното  вещество  върху  почвата  при 
определено  време  t i на извършване  на теста  (μg); 
m 0 = маса  на тестваното  вещество  в епруветката  в началото  на 
теста  (μg); 
С о = първоначалната  маса  на тествания  разтвор  в контакт  с 
почвата  (μg cm  -3 ); ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1226
 
C vod ads ðt i Þ = съдържанието  на тестваното  вещество  във водната  
фаза  при определено  време  t i на извършване  на теста  
(μg сm -3 ); така концентрацията  се определя  аналитично , 
като се взимат  предвид  стойностите , дадени  по време  на 
пускането  на празен  ход. 
V 0 = първоначално  количество  на тествания  разтвор  в контакт  с 
почвата  (сm 3 ). 
Стойностите  на процента  адсорбция  A t i или C vod ads ðt i Þ се представят  
графично  противоположно  на времето  и времето , след  което  се 
определя  времето  за постигане  на равновесие  на сорбция . Примери  
за такива  графики  са дадени  респективно  във фигури  1 и 2.
 
Фигура  1 
Изобразяване  на равновесието  на адсорбция
  
Фигура  2 
Концентрация  на масата  на тестваното  вещество  
във водната  фаза  (С aq ) спрямо  времето . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1227
 
б) Сериен  метод  
При следните  уравнения  се взема  предвид , че процедурата  на 
адсорбция  се извършва  чрез измерване  на тестваното  вещество  в 
малки  аликвотни  части  на водната  фаза , при определени  интервали  
от време . 
— По време  на всеки  интервал  от време  се изчислява  количеството  
адсорбирано  вещество  върху  почвата , както  следва : 
— за първия  часови  интервал  Δt 1 = t 1 – t 0 
m p ads ðΔt 1 Þ ¼ m  0 Ä m m ads ðt 1 Þ · Í 
V 0 
v a A Î (4) 
— за втория  часови  интервал  Δt 2 = t 2 -t 1 
m p ads ðΔt 2 Þ ¼ m  m ads ðt 1 Þ · Í 
V 0 
v a A Î 
Ä m  m ads ðt 2 Þ · Í 
V 0 Ä v a A 
v a A Î (5) 
— за третия  часови  интервал  Δt3 =t  3 -t 2 
m p ads ðΔt 3 Þ ¼ m m ads ðt 2 Þ · Í 
V 0 Ä v a A 
v a A Î 
Ä m  m ads ðt 3 Þ · Í 
V 0 Ä 2 · v a A 
v a A Î (6) 
— за n-ти часови  интервал  Δtn = tп- tп-1 
m p ads ðΔt n Þ ¼ m  m ads ðt nÄ1 Þ · Í 
V 0 Ä ðn Ä 2Þ · v a A 
v a A Î 
Ä m m ads ðt n Þ · V 0 Ä ðn Ä 1Þ · v a A Ê Ì  
v a A 0 
@ 1 
A (7) 
— Процентът  на адсорбция  при всеки  интервал  от време  A  Δt i се 
изчислява , като се използва  следното  уравнение : 
A Δt i ¼ m p ads ðΔt i Þ 
m 0 · 100ð%Þ (8) 1 
докато  процента  на адсорбция  A  t i за време  t i е дадено  с 
уравнението : 
A t i ¼ Σ 
j ¼ Δt 1 Δt i 
m s ads ðjÞ 
m 0 · 100 ð%Þ (9) 1 
Стойностите  на адсорбция  A t i и A Δt i (по отношение  на нуждите  на 
проучването ) се изобразяват  графично  противоположно  на времето  
и времето , след  което  се определя  времето  за постигане  на 
равновесие  на сорбция . 
— При време  на постигане  на равновесие  t eq : 
— масата  на адсорбираното  тествано  вещество  върху  почвата  е: 
m p ads ðeqÞ ¼ Σ n 
Δt i ¼ 1 m p ads ðΔt i Þ (10)  1 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1228
 
— масата  на тестваното  вещество  в разтвора  е: 
m vod ads ðeqÞ ¼ m  0 Ä Σ n 
Δt i ¼ 1 m s ads ðΔt i Þ (11)  1 
— и процентът  на адсорбция  при постигане  на равновесие  е: 
A eq ¼ m s ads ðeqÞ 
m 0 · 100ð%Þ (12)  1 
Използваните  по-горе параметри  се определят  като: 
m p ads ðΔt 1 Þ; m p ads ðΔt 2 Þ; :::; m p ads ðΔt n Þ = масата  вещество , адсорбирано  
върху  почвата  за интервали  от 
време  Δt 1 , Δt 2 ,..., Δt n (μg); 
m m ads ðt 1 Þ; m m ads ðt 2 Þ; :::; m n ads ðt n Þ = масата  вещество , измерено  в 
аликвотна  част v a A за определено  
време  t 1 , t 2 ,..., t  n съответно  (μg); 
m s ads ðeqÞ = маса  на адсорбираното  вещество  
върху  почвата  при равновесие  на 
адсорбция  μg; 
m aq ads ðeqÞ = маса  на веществото  в разтвора  
при равновесие  на адсорбция  μg; 
v a A = обем  на аликвотната  част, при 
която  тестваното  вещество  се 
измерва  (сm 3 ); 
A Δt i = процент  адсорбция , съответстващ  
на интервала  от време  Δt 1 (%) 
A eq = процент  на адсорбция  при 
равновесие  на адсорбция  (%).  
ДЕСОРБЦИЯ  (%)  
Времето  t 0 , когато  започва  експериментът  на кинетиката  на дезорбция , се 
счита  като момента , когато  максимално  възстановения  обем  тествано  
вещество  в разтвора  (след  като е постигнато  равновесие  на адсорбция ) се 
замества  със същия  обем  0,01 М СаСl 2 разтвор . 
а) Паралелен  метод  
При определено  време  t i масата  на тествано  вещество  се измерва  във 
водната  фаза , взето  от епруветка  i ( V  i 
r Ê Ì  
) и масата  на десорбция  се 
изчислява  съгласно  уравнението : 
m vod des ðt i Þ ¼ m  m des ðt i Þ · Í 
V 0 
v r i Î 
Ä m vod A (13) 
При равновесие  на десорбция  t i = t eq и следователно  
m vod des ðt i Þ = m vod des ðeqÞ. 
Масата  на десорбираното  вещество  при интервал  от време  Δt i е даден  
в уравнението : 
m vod des ðΔt i Þ ¼ m  vod des ðt i Þ Ä Σ 
j ¼ 1 i ¼ 1 
m vod des ðjÞ (14) 
Процентът  на десорбция  се изчислява : 
при определено  време  t i с уравнението : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1229
 
D t i ¼ m vod des ðt i Þ 
m p ads ðeqÞ · 100 ð%Þ (15) 
и при интервал  (Δt i ) с уравнението : 
D Δt i ¼ m vod des ðΔt i Þ 
m p ads ðeqÞ · 100 ð%Þ (16) 
където : 
D t i = процент  на десорбция  при определено  време  t i (%); 
D Δt i = процент  на десорбция , съответстващ  на интервал  от време  
Δt i (%); 
m aq des ðt 1 Þ = масата  на тестваното  вещество , десорбирано  при интервал  
от време  t i (μg); 
m aq des ðΔt i Þ = масата  на тестваното  вещество , десорбирано  при интервал  
от време  Δt i (μg); 
m m des ðt i Þ = масата  на тестваното  вещество , измерено  аналитично  при 
време  t i в количество  V r i , който  е взет за анализа  (μg); 
m aq A = масата  на тестваното  вещество , останало  от равновесието  
на адсорбация  заради  непълното  заместване  на колич­  
еството  (μg); 
m aq A ¼ m vod ads ðeqÞ · V 0 Ä V R 
V 0 Í Î  (17) 
m aq ads ðeqÞ = масата  на тествано  вещество  в разтвор  при равновесие  на 
адсорбция  (μg); 
V R = обем  на плаващите  върху  повърхността  частици , 
отстранени  от епруветката  след  постигане  на равновесие  
на адсорбция  и заместени  със същото  количество  0,01 М 
СаСl 2 разтвор  (сm 3 ); 
V r i = количеството  почва , взето  от епруветката  (i) за измерване  
на тестваното  вещество , в измерване  на кинетиката  на 
десорбция  (сm 3 ). 
Стойностите  на десорбция  D  t i и D  Δt i (съгласно  нуждите  на 
проучването ) се изобразяват  графично  противоположно  на времето  и 
времето , след  което  се определя  постигане  на равновесието  на 
десорбция . 
б) Сериен  метод  
При следното  уравнение  се взима  предвид , че процедурата  на 
адсорбция , която  е предшествала , се е извършила  чрез изчисляване  
на тестваното  вещество  в малка  аликвотна  част v  a A Ê Ì  
от водната  
фаза  (сериен  метод  в 1.9 „Извършване  на теста “). Приема  се че: а) 
количеството  плаващи  частици , отстранени  от епруветката  след  
експеримент  за кинетиката  на адсорбция , се заместват  със същото  
количество  0,01 М СаСl 2 разтвор  (V  R ), и б) и общото  количество  на 
водната  фаза  в контакт  с почвата  (V  т ) по време  на експеримент  за 
кинетиката  на десорбция  остава  постоянно  и е дадено  в уравнението : 
V T ¼ V  0 Ä Σ n 
i ¼ 1 v a A ðiÞ (18) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1230
 
При време  t i : 
— масата  на тестваното  вещество  се измерва  в малка  аликвотна  
част v  a D Ê Ì  
и десорбната  маса  се изчислява  съгласно  уравнението : 
m vod des ðt i Þ ¼ m  m des ðt i Þ · Í 
V T 
v a D Î 
Ä m  vod A · V T Ä ði Ä 1Þ · v a D Ê Ì  
V T 0 
@ 1 
A (19) 
— при равновесие  на десорбция  t i = t eq и следователно  
m vod des ðt i Þ = m vod des ðeqÞ. 
— Процентът  на десорбция  D t i се изчислява  чрез следното  уравнение : 
D t i ¼ m vod des ðt i Þ 
m p ads ðeqÞ · 100 ð%Þ (20) 
При интервал  от време  Δt i : 
По време  на всеки  интервал  от време  количеството  десорбирано  
вещество  се изчислява , както  следва : 
— за първия  часови  интервал  Δt i = t 1 – t 0 
m vod des ðΔt 1 Þ ¼ m  m des ðt 1 Þ · Í 
V T 
v a D Î 
Ä m  vod A a m  p des ðt 1 Þ ¼ m  p vod ðeqÞ Ä m vod des ðΔt 1 Þ (21) 
— за втория  часови  интервал  Δt 2 = t 2 -t 1 
m vod des ðΔt 2 Þ ¼ m  m des ðt 2 Þ · Í 
V T 
v a D Î 
Ä m vod des ðΔt 1 Þ · V T Ä v a D Ê Ì  
V T 0 
@ 1 
A Ä m vod A · V T Ä v a D Ê Ì  
V T 0 
@ 1 
A 
m p des ðt 2 Þ ¼ m  p ads ðeqÞ Ä m  vod des ðΔt 1 Þ þ m vod des ðΔt 2 Þ h i  
(22) 
— за n-ти часови  интервал  Δt n = t n -t n-1 
m vod des ðΔt n Þ ¼ Ï 
m m des ðt n Þ · Í 
V T 
v a D Î 
Ä m  vod A · V T Ä n Ä 1ð Þ  · v a D Ê Ì  
V T 0 
@ 1 
A 
Ä Σ 
i ¼ 1; n ≠ 1 nÄ1 V T Ä n Ä ið Þ  · v a D Ê Ì  
V T · m vod des ðΔt i Þ 0 
@ 1 
A # 
и 
m p des ðt n Þ ¼ m  p ads ðeqÞ Ä Σ 
i ¼ 1; n ≠ 1 n 
m vod des ðΔt i Þ (23) 
Накрая  при всеки  интервал  от време  D Δt i ce изчислява  със следното  
уравнение : 
D Δt i ¼ m vod des ðΔt i Þ 
m p ads ðeqÞ · 100 ð%Þ (24) 
докато  процентът  на десорбция  D t i при време  t i е даден  чрез следното  
уравнение : 
D t i ¼ Σ 
j ¼ Δt 1 Δt i 
m aq des ðjÞ 
m s ads ðeqÞ · 100 ¼ m aq des ðt i Þ 
m s ads ðeqÞ · 100ð%Þ (25) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1231
 
където  гореспоменатите  параметри  се определят , както  следва : 
m des 
s ðΔt 1 Þ, m des 
s ðΔt 2 Þ,... , m des 
s ðΔt n Þ = масата  вещество , останало  
адсорбирано  върху  почвата  
след  интервали  от време  
Δt 1 ,Δt 2 ,..., Δt n респективно  
(μg); 
m des 
aq ðΔt 1 Þ, m des 
aq ðΔt 2 Þ,... , m des 
aq ðΔt n Þ = масата  вещество , останало  
адсорбирано  върху  почвата  
след  интервали  от време  Δt 1 , 
Δt 2 ,..., Δt n респективно  (μg); 
m des 
m ðt 1 Þ, m des 
m ðt 2 Þ,... , m des 
m ðt n Þ = масата  вещество , измерено  в 
аликвотна  част v  D 
a Ê Ì  
за 
определено  време  t 1 , t 2 ,..., t  n 
съответно  (μg); 
V т = общо  количество  на водната  
фаза  в контакт  с почвата  
през време  на експеримента  
на кинетика  на десорбция , 
извършен  със сериен  метод  
(сm 3 ); 
m A 
aq = масата  на тестваното  
вещество , останало  от равнов­  
есието  на адсорбция  заради  
непълното  заместване  на 
количеството  (μg); 
m A 
vod ¼ V 0 Ä Σ n 
i ¼ 1 v A 
a ið Þ Í Î 
Ä V R 
V 0 Ä Σ n 
i ¼ 1 v A 
a ið Þ Í Î 0 
B B B @ 1 
C C C A · m
 ads 
vod ðeqÞ (26) 
V R = обем  на плаващите  върху  
повърхността  частици , 
отстранени  от епруветката  
след  постигане  на равновесие  
на адсорбция  и заместени  със 
същото  количество  0,01 М 
СаСl 2 разтвор  (сm 3 ); 
v a D = количество  аликвотна  част, 
изпробвана  за аналитични  
цели  от епруветката  (i) по 
време  на експеримент  на 
кинетиката  на десорбция , 
извършен  със сериен  метод  
(cm  3 ); 
v D 
a ≤ 0; 02 · V T (27) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1232
 
Приложение  6 
АДСОРБЦИЯ -ДЕСОРБЦИЯ  В ПОЧВАТА : ФОРМУЛЯР  ЗА ОТЧИТАНЕ  
Изследвано  вещество : 
Изследвана  почва : 
Съдържание  на суха  маса  в почвата  (105  o С, 12 h): %  
Температура : o С 
Приложимост  на аналитичния  метод  
Претеглена  почва  g 
Почва : суха  маса  g 
Обем  на разтвор  на СаСl 2 сm 3 
Нормална  концентрация  на крайния  разтвор  μg cm  -1 
Аналитична  концентрация  на крайния  разтвор  μg cm  -1 
Принцип  на използвания  аналитичен  метод : 
Калибрация  на аналитичния  метод : 
Изследвано  вещество : 
Изследвана  почва  
Съдържание  на суха  маса  в почвата  (105  o С, 12 h): . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . %  
Температура : . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  o С 
Използван  аналитичен  метод : Непряк  □ Паралелен  □ Сериен  □ 
Пряк □ 
Тест  за сорбция : тестови  проби  
Знак  Единици  Време  на 
равновесиет  0 Време  на 
равновесиет  0 Време  на 
равновесиет  0 Време  на 
равновесиет  0 
Епруветка  № 
Претеглена  почва  — g 
Почва : суха  маса  m  почва g 
Обем  вода  в претеглената  
почва  (изчислено ) V ws сm 3 
Обем  на разтвор  0,01M на 
CaCl  2 за изравняване  на 
почвата  сm 3 
Обем  на основния  разтвор  сm 3 
Пълен  обем  на водната  фаза  
при контакт  с почвата  V 0 сm 3 
Начална  концентрация  на 
тестовия  разтвор  C 0 μg cm  -3 
Маса  на тестваното  вещество  
в началото  на теста  m 0 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1233
 
Знак  Единици  Време  на 
равновесиет  0 Време  на 
равновесиет  0 Време  на 
равновесиет  0 Време  на 
равновесиет  0 
След  разбъркване  и центрофугиране  
НЕПРЯК  МЕТОД  
Паралелен  метод  
Концентрация  на тестваното  
вещество  при водната  фаза , 
включително  и корекция  на 
празна  проба  C aq ads ðt i Þ μg cm  -3 
Сериен  метод  
Измерена  маса  на тестваното  
вещество  в аликвотна  част m m ads ðt i Þ μg 
ПРЯК  МЕТОД  
Маса  на тестваното  вещество , 
адсорбирано  от почвата  m s ads ðt i Þ μg 
Изчисление  на адсорбцията  
Адсорбция  A  t i % 
A Δt i % 
Средства  
Коефициент  на адсорбция  K  d cm 3 .g -1 
Средства  
Коефициент  на адсорбция  K  oc cm 3 .g -1 
Средства  
Тествано  вегцество : 
Тествана  почва : 
Съдържание  на суха  маса  в почвата  (105  o С, 12 h): . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . %  
Температура : . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  o С 
Адсорбционен  тест: празни  проби  и контроли  
Знак  Единици  Празни  проби  Празни  проби  Контроли  
Епруветка  № 
Претеглена  почва  g 0 0 
Количество  вода  в претеглената  
почва  (изчислено ) cm 3 
Добавено  количество  от 0,01 М 
разтвор  на СаСl 2 cm 
Добавено  количество  от основен  
разтвор  на тестваното  вещество  cm 3 0 0 
Пълен  обем  на водната  фаза  (изч­  
ислено ) cm 3 — —  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1234
 
Знак  Единици  Празни  проби  Празни  проби  Контроли  
Начална  концентрация  на 
тестваното  вещество  във водната  
фаза  μg cm-  3 
След  разбъркване  и центрофугиране  
Концентрация  във водната  фаза  μg cm  -3 
Забележка : Добавете  колони , ако е необходимо . 
Тествано  вещество : 
Тествана  почва : 
Съдьржапие  па суха  маса  в почвата  (105  o С. 12 Ь): . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . %  
Температура : . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  o С 
Баланс  на масата  
Знак  Единици  
Епруветка  № 
Претеглена  почва  — g 
Почва : суха  маса  m  почва g 
Обем  на водата  в претеглената  почва  
(изчислено ) V ws ml 
Обем  на 0,01 М разтвор  на СаСl 2 за 
изравняване  на почвата  ml 
Обем  на основния  разтвор  cm  3 
Пълен  обем  на водната  фаза  при 
контакт  с почвата  V 0 cm 3 
Начална  концентрация  на тестовия  
разтвор  C0 μg.cm-  3 
Време  на равновесието  — h  
След  разбъркване  и центрофугиране  
Концентрация  на тестваното  вещество  
при водната  фаза , включително  и 
корекция  на празна  проба  C aq ads ðeqÞ |μg.cm-  3 
Равновесие  на адсорбцията  t  eq h 
Първо  разреждане  с разтворител  
Отстранен  обем  на водната  фаза  V  rec cm 3 
Добавен  обем  разтворител  Δv cm 
Първа  екстракция  с разтворител  
Сигнал  при анализ  на разтворител  S  E1 различни  
Концентрация  на тестваното  вещество  
в разтворител  С E1 μg.cm-  3 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1235
 
Знак  Единици  
Маса  на веществото , екстрахирано  от 
почвата  и от стените  на съда  m E1 μg 
Второ  разреждане  с разтворител  
Отстранен  обем  разтворител  Δ v S cm 3 
Добавен  обем  разтворител  Δv cm 
Втора  екстракция  с разтворител  
Сигнал  при анализ  на разтворимата  
фаза  S E2 различни  
Концентрация  на тестваното  вещество  
в разтворител  C E2 μg.cm-  3 
Маса  на веществото , екстрахирано  от 
почвата  и от стените  на съда  т Е2 μg 
Пълна  маса  на тестваното  вещество , 
екстрахирано  на два етапа  m E μg 
Баланс  на масата  MB %  
Тествано  вещество : 
Тествана  почва : 
Съдържание  на суха  маса  в почвата  (105  o С, 12 h): . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . %  
Температура : . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  o С 
Адсорбни  изотерми  
Символ  Единиц a 
Епруветка  № 
Претеглена  почва  — g 
Почва : суха  маса  Е g 
Обем  на водата  в претеглената  
почва  (изчислено ) cm 3 
Обем  на 0,01 М разтвор  на 
СаСl 2 за изравняване  на 
почвата  cm 
Обем  на основния  разтвор  cm  3 
Пълен  обем  на водната  фаза  
при контакт  с почвата  (изч­  
ислено ) V 0 cm 
Концентиран  разтвор  μg.cm-  3 
Равновесие  на адсорбцията  — h  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1236
 
Символ  Единиц a 
След  разбъркване  и центрофугиране  
Концентрация  на тестваното  
вещество  при водната  фаза , 
включително  и корекция  на 
празна  проба  C aq ads ðeqÞ μg cm- 
Температура  o C 
Маса  на адсорбцията  за 
единица  почва  C s ads ðeqÞ μg-g -1 
Регресен  анализ : 
стойност  K F аds : 
стойност  на l/n: 
регресен  коефициент  r 2 : 
Тествано  вещество : 
Тествана  почва : 
Съдържание  на суха  маса  в почвата  (105  o С, 12 п): . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . %  
Температура : . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .  o С 
Използва  се аналитичният  метод : Непряк  
Пряк □ 
□ Паралелен  □ Сериен  □ 
Тест  за десорбция  
Символ  Единица  Времеви  
интервал  Времеви  
интервал  Времеви  
интервал  Времеви  
интервал  
Епруветка  № от етап на адсорбция  
Маса  на веществото  адсорбирано  в 
почвата  при равновесие  на адсорбция  m s ads ðeqÞ μg 
Отстранен  обем  при водна  фаза , 
заменена  от 0,01 М СаСl 2 V R cm 3 
Пълен  обем  на водната  
фаза  при контакт  с 
почва  РМ V  0 cm 3 
ЅМ V  T cm 3 
Маса  на тестваното  вещество , останало  
след  равновесие  на адсорбцията  в 
резултат  на непълно  възстановяване  на 
обема  m vod A μg 
Киветика  на десорбцията  
Претеглена  маса  на веществото , 
отделено  от почвата  за време  l i m m des ðt i Þ μg 
Обем  на разтвора  взет от 
епруветка  0) за 
измерване  на тестваното  
вещество  РМ V  i r cm 3 
ЅМ V  D a cm 3 
Маса  на веществото  отделено  от 
почвата  във време  1, (изчислено ) m vod des ðt i Þ μg 
Маса  на веществото  отделено  от 
почвата  във времеви  интервал  Delta  li 
(изчислено ) m vod des ðΔt i Þ μg ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1237
 
Символ  Единица  Времеви  
интервал  Времеви  
интервал  Времеви  
интервал  Времеви  
интервал  
Процент  на десорбцня  
Десорбция  във време  l i D ti % 
Десорбция  във времеви  интервал  Ат, D  Δt i % 
Видим  коефициент  на десорбция  K  des 
РМ: паралелен  метод  
SM: сериен  метод  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1238
 
В.19. ИЗЧИСЛЯВАНЕ  КОЕФИЦИЕНТА  НА АДСОРБЦИЯ  (К ос ) 
НА ПОЧВАТА  И НА УТАЙКАТА  ОТ ОТПАДНИ  ВОДИ , 
ИЗПОЛЗВАЩИ  ВИСОКОЕФЕКТИВНА  ТЕЧНА  ХРОМАТО­  
ГРАФИЯ  (HPLC)  
1. МЕТОД  
Този  метод  е точно  копие  на ОECD TG 121 (2001).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Поведението  на веществата  при сорбция  в почвите  или в 
утайките  от отпадни  води  може  да се опише  чрез параметрите , 
които  са определени  със средствата  на метода  В.18. Важен  
параметър  е коефициентът  на адсорбция , който  се определя  
като съотношение  между  концентрацията  на веществото  в 
почвата /утайката  и концентрацията  на веществото  във водната  
фаза  при равновесие  на адсорбция . Коефициентът  на адсорбция , 
нормализиран  към съдържанието  на органичен  въглерод  в 
почвата  К ОС , е полезен  индикатор  на свързващата  способност  
на химикала  с органичните  частици  на почвата  и утайката  от 
отпадни  води  и позволява  да се направи  сравнение  между  разл­  
ичните  химикали . Този  параметър  може  да се изчисли  чрез 
корелация  с водоразтворимостта  и коефициента  на разделяне  
n-октанол /вода  (1) (2) (3) (4) (5) (6) (7).  
Методът  на извършване  на експеримента , който  е описан  при 
този тест, използва  HPLC за изчисляване  на коефициента  на 
адсорбция  К ос в почвите  или в утайките  от отпадни  води  (8). 
Изчисленията  са по-надеждни  от тези на QSAR (9). Като  метод  
на изчисляване  не може  напълно  да замести  експериментите  за 
равновесие  на подбора , използван  при метод  на тестване  В.18. 
Обаче  изчисленият  К ос може  да е полезен  при избиране  на 
подходящи  параметри  за проучванията  на адсорбция /десорбция , 
съгласно  метод  В.18 чрез изчисляване  на K d (коефициент  на 
разпределяне ) или K f (коефициент  на адсорбция  на Фройндлих ) 
съгласно  уравнение  3 (вж. точка  1.2).  
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
K d : коефициентът  на разпределяне  се определя  като съот­  
ношение  на концентрацията  при равновесие  С на разтвореното  
тествано  вещество  в двете  системи  фази , съдържащ  сорбиращо  
вещество  (почва  или утайка ) и водната  фаза ; той е с много  
малка  стойност , когато  концентрациите  при двете  фази  се 
изразяват  на основата  на тегло /тегло . В случаите , когато  е 
дадена  концентрацията  във водната  фаза  на основата  на тегло /­ 
обем , тогава  единиците  са ml g  -1 . K  d може  да варира  със 
свойството  сорбция  и може  да зависи  от концентрацията . 
K d ¼ C почва 
C вода или C утайка  
C вода (1) 
където : 
С почва = концентрация  тествано  вещество  в почвата  при 
равновесие  (μg g -1 ) 
С утайка  = концентрация  тествано  вещество  в утайките  при 
равновесие  (μg g -1 ) 
С вода = концентрация  тествано  вещество  във водната  фаза  
при равновесие  (μg g -1 , μg ml  -1 . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1239
 
K f : коефициент  на адсорбция  на Фройндлих  се определя  като 
концентрация  на тестваното  вещество  в почвата  или утайките  
(х/m), когато  концентрацията  на равновесие  C вода във водната  
фаза  е равна  на едно ; единиците  са μg g  -1 сорбиращо  
вещество . Стойността  може  да варира  със свойствата  на 
сорбиращото  вещество . 
log x 
m ¼ logK  f þ 1 
n ·logC  aq (2) 
където : 
х/m = количеството  тествано  вещество  х (μg), адсорбирано  
върху  количеството  сорбиращо  вещество  m (g) при 
равновесие  
1/n = наклон  на изотерма  на адсорбция  на Фройндлих  
С вода = концентрация  тествано  вещество  във водната  фаза  
при равновесие  (μg ml  -1 ) 
ПРИ  С вода ¼ 1; logK  f ¼ log x 
m 
К ос : коефициент  на разпределяне  (K  d ) или коефициент  на 
адсорбция  на Фройндлих  (K  f ), нормализирани  към 
съдържанието  на органичен  въглерод  (f  oc ) на сорбиращото  
вещество ; по-специално  за нейонизираните  химикали  той е 
приблизителен  индикатор  за степента  на адсорбция  между  
веществото  и сорбиращото  вещество  и позволява  да се 
направи  сравнение  между  различните  химикали . В зависимост  
от размера  на K d и K f , К ос може  да е с много  малка  стойност  
или има единици  ml g  -1 или μg g  -1 органични  частици . 
Koc ¼ Kd 
foc ðбез изменение  или в ml·g Ä1 Þили Kf 
foc ðμg·g Ä1 Þ (3) 
Отношението  между  К d и K ОС не е винаги  линейно  и тогава  К ос 
стойностите  могат  да варират  от почва  до почва , но тяхната  
променливост  е много  намалена  в сравнение  с K d и K f стойно­  
стите . 
Коефициентът  на адсорбция  (K ОС ) ce извлича  от коефициента  на 
използване  на мощността  (k'') в зависимост  от кривата  за 
калибриране  на log k' като функция  на log К ос от избраните  
съединения  еталони . 
k 0 ¼ t R Ä t 0 
t 0 (4) 
където : 
t R = HPLC време  на запазване  на теста  и вещество  еталон  
(минути ) 
t o = HPLC време  на престой  (минути ) (вж. точка  1.8.2).  
P ow : коефициент  на разделяне  октанол -вода  се определя  като 
съотношение  на концентрациите  на разтворено  вещество  в n- 
октанол  и вода ; той е с много  малка  стойност . 
Pow ¼ Соктанол  
Свода ð¼ KowÞ (5) 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЕТАЛОНИ  
Структурната  формула , чистотата  и константната  на разпадане  
(ако е целесъобразно ) трябва  да се знаят  преди  използването  на 
метода . Използва  се информацията  за разтворимост  във вода  и 
органични  разтвори , върху  коефициент  на разделяне  октанол - 
вода  и характеристиките  на хидролизата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1240
 
За да се съпоставят  измерените  HPLC данни  за запазване  на 
тестваното  вещество  с неговия  коефициент  на адсорбция  К оc 
трябва  да се състави  графика  на калибриране  с log K  OC в съотв­  
етствие  с log k. Използват  се минимум  шест  точки  еталони , поне  
една  отгоре  и една  отдолу  на очакваната  стойност  на тестваното  
вещество . Точността  на метода  ще бъде  значително  подобрена , 
ако се използват  веществата  еталони , които  структурно  се 
отнасят  към тестваното  вещество . Ако не са налице  такива  
данни , тогава  ползвателят  избира  подходящите  вещества  на 
калибриране . В този случай  се избира  по-основна  мрежа  от 
структурно  хомогенни  вещества . Веществата  и К ос -стойности , 
които  могат  да се използват , са изброени  в приложението  в 
таблица  1 за утайките  и в таблица  3 за почвата . Посочват  се 
причините  за избор  на други  вещества  на калибриране . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
HPLC се извършва  с аналитични  колони , свързани  с 
цианопропил  твърда  фаза , съдържащи  липофилна  и полярна  
половина . Използва  се умерено  стационарна  фаза , основана  на 
кварцова  матрица : 
-O -Si — CH  2 — CH  2 — CH  2 — CN 
силициев  
двуокис  неполярна  част полярна  
половина  
Принципът  на метода  на теста  е подобен  на метода  на тестване  
А.8 (коефициент  на разпределяне , HPLC метод ). Докато  
преминава  през колоните  заедно  с мобилната  фаза , тестваното  
вещество  взаимодейства  със стационарната  фаза . Като  резултат  
от разпределянето  между  мобилната  и стационарната  фаза , 
тестваното  вещество  се забавя . Двойният  състав  на 
стационарната  фаза , имащ  полярна  и неполярна  страна , 
позволява  взаимодействие  с полярните  и неполярните  групи  от 
молекули  по начин , подобен  на случая  за органичните  частици  в 
матриците  почва  или утайка . Това  позволява  да се създаде  
отношение  между  времето  за задържане  в колоната  и коеф­  
ициента  на адсорбция  на органичните  частици . 
PH има значително  въздействие  върху  поведението  при сорбция , 
и по-специално  за полярните  вещества . За земеделските  почви  
или утайници  на станциите  за преработване  на утайките  от 
отпадни  води  pH обикновено  варира  между  5,5 и 7,5. За 
веществата , които  се йонизират , трябва  да се извършат  два 
теста  с йонизирана  и нейонизирана  форма  при подходящ  
буферен  разтвор , но само  в случаи , когато  поне  10 % от 
тестваното  съединение  ще се дисоциират  в pH от 5,5 до 7,5.  
Тъй като отношението  между  задържането  на HPLC колона  и 
коефициента  на адсорбция  се използват  за изчисление , не се 
изисква  количествен  аналитичен  метод  и са необходими  само  
изчисленията  на времето  за задържане . Ако е на разположение  
подходяща  мрежа  от вещества  еталони  и могат  да се използват  
стандартните  условия  за извършване  на експериментите , 
методът  осигурява  бърз  и ефикасен  метод  за оценяване  на коеф­  
ициента  на адсорбция  K OC . 
1.5. ПРИЛОЖИМОСТ  НА ТЕСТА  
HPLC метод  се прилага  за химичните  вещества  (не-етикетирани  
или етикетирани ), за които  е налице  подходяща  система  за 
откриване  (например  спектрометър , радиоактивен  детектор ) и 
които  са достатъчно  устойчиви  по време  на експеримента . 
Може  по-специално  да бъде  полезен  за химикали , които  е 
трудно  да се изследват  в други  експериментални  системи  (т.е. 
летливи  вещество ; вещества , които  не са разтворими  във вода  
при концентрация , която  може  да се измери  аналитично ; 
веществата  с високо  сродство  към повърхността  на инкуб­  
ационната  система ). Методът  може  да се използва  за смеси , 
които  дават  неразделни  отмити  ивици . В такъв  случай  се 
формулират  горните  и долни  ограничения  на log K  oc 
стойности  на съединенията  на тестваната  смес . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1241
 
Примесите  могат  понякога  да причинят  проблеми  при 
тълкуването  на резултатите  от HPLC, но те не са от голямо  
значение , когато  тестваното  вещество  може  да бъде  аналитично  
ясно  определено  и разделено  от примесите . 
Методът  е валиден  за веществата , които  са изброени  в таблица  1 
на приложението  и също  са приложими  за различните  видове  
химикали , принадлежащи  на следните  класове : 
— ароматни  амини  (например : трифлуралин , 4-хлороанилин , 
3,5-динитроанилин , 4- метиламин , N-метиламин , 1-нафт­  
иламин ), 
— ароматни  естери  на карбоксилните  киселинни  (например : 
метилестер  на бензонената  киселина , 3,5- естер  динитробен­  
зонената  киселина ), 
— ароматни  хидрокарбони  (например  толуол , ксилол , 
етилбензол , нитробензол ), 
— естери  на арилоксифеноксипропиоловите  киселинни  
(например  диклофоп -метил , феноксапроп -етил , фенокс­  
апроп -Р-етил ) 
— бензимидазол  и имидазол  фунгициди  (например  
карбендазим , фуберидазол , триазоксид ), 
— амиди  на карбоксилните  киселини  (например  2- 
хролбензамид , N, N-диметилбензамид , 3,5-динитробензамид , 
N-метилбензамид , 2-нитробензамид , 3-нитробензамид ), 
— хлорирани  въглеводороди  (например  ендосулфан , 
дихлордифенил -трихлоретан , хексахлорбензен , квинтозен , 
1,2,3-трихлорбензен ), 
— органофосфор  инсектициди  (например  азинфос -метил , дизул­  
фотон , фенамифос , изофенфос , пиразофос , сулпрофос , 
тризофос ), 
— феноли  (например  фенол , 2-нитрофенол , 4-нитрофенол , 
пентахлорфенол , 2,4,6-трихлорфенол , 1-нафтол ), 
— фенилурея  производни  съединения  (например  изопротурон , 
монолинурон , пенсикурон ), 
— багрилни  вещества  (например  Acid Yellow 219, Basic Blue 
41, Direct Red 81),  
— полиароматни  хидрокарбони  (например  аценафтен , нафт­  
алин ), 
— 1,3,5- триазин  хербициди  (например  прометрин , пропазин , 
симазин , тербутрин ), 
— триазол  производни  съединения  (например  тебуконазол , 
тридимефон , традименол , трипенфенол ), 
Методът  не се прилага  за вещества , които  реагират  или с 
отмиващ  агент  или със стационарната  фаза . Също  не се 
прилагат  за вещества , които  взаидействат  по специфичен  
начин  с неорганични  съединения  (например  образуване  на 
група  от комплекси  с глинени  минерали ). Методът  може  да не 
работи  за повърхностните  активни  вещества , неорганичните  
съединения  и умерените  и силни  органични  киселини  и 
основи . Могат  да се определят  log K  oc стойности  с обхват  от 
1,5 до 5,0. Веществата , които  се йонизират  трябва  да се измерят  
като се използва  буферна  мобилна  фаза , но се вземат  грижи  за 
да се избегне  утаяване  на буферни  съединения  или тестваното  
вещество . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1242
 
1.6. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
1.6.1.  Точност  
Обикновено  коефициента  на адсорбция  на тестваното  вещество  
може  да се изчисли  с ± 0,5 log единици  на стойността , 
определена  чрез метода  за равновесие  на Фройндлих  (виж 
таблица  1 в допълнението ). По-висока  точност  може  да се 
постигне , ако използваните  вещества -еталони  структурно  се 
отнасят  към тестваното  вещество . 
1.6.2.  Повтарясмост  
Изчисленията  следва  да се правят  поне  два пъти . Стойностите  
на log K  OC , получени  от индивидуалните  изследвания  са в 
обхват  от 0,25 log единици . 
1.6.3.  Възпроизводимост  
Полученият  досега  опит  при прилагането  на този метод  се 
поддържа  от неговата  валидност . Проучванията  на HPLC 
метод , който  използва  48 вещества  (повечето  пестициди ), за 
които  има данни , отнасящи  се до K ОС върху  почвата , дават  
коефициента  на корелация  R = 0,95 (10) (11).  
Направено  е сравнение  на теста  между  11 участващи  
лаборатории , за да се подобри  и валидира  методът  (12). 
Резултатите  са дадени  в таблица  2 от приложението . 
1.7. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.7.1.  Предварителна  оценка  на коефициента  на адсорбция  
Коефициентът  на разделение  на октанол -вода  Р оw = (К оw ), и до 
някаква  степен  разтворимостта  във вода  може  да се използват  
като индикатори  за степента  на адсорбция , по-специално  за 
нейонизираните  вещества , и по този начин  може  да се 
използват  за предварителни  сведения . Разнообразието  от 
полезни  корелации  е било  публикувано  за няколко  групи  
химикали  (1) (2) (3) (4) (5) (6) (7).  
1.7.2.  Апаратура  
Изисква  се течен  хроматограф , оборудван  с пулсационна  помпа  
и подходящ  уред  за откриване . Препоръчва  се използването  на 
инжекционен  клапан  с отвор  за впръскване . Използват  се 
химично  свързани  с цианопропил  смоли  на основата  на 
силициев  двуокис  (например  Хайперсил  и Зорбакс  CN). 
Колоната  на безопасност  от същия  материал  може  да бъде  
поставена  между  системата  за впръскване  и аналитичната  
колона . Колоните  от различните  доставчици  могат  да варират  
значително  в тяхната  отделна  ефективност . Като  ръководство , 
се постигат  следните  фактори  за капацитет  k': log k' > 0,0 за 
log K  Oc = 3,0 И log k' > – 0,4 за log K  Oc = 2,0, когато  се 
използва  метанол /вода  55/45 % като мобилна  фаза . 
1.7.3.  Мобилни  фази  
Проучени  са няколко  мобилни  фази  и се препоръчват  следните  
две: 
— метанол /вода  (55/45 % v/v),  
— метанол /0,01 М цитрат -буфер  рН 6,0 (55/45 % v/v).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1243
 
За приготвянето  на цитрат -буферен  разтвор  се използват  HPLC 
степен  на метанола  и дестилираната  вода  или отмиващ  разтвор . 
Преди  употреба  сместа  се дегазира . Използват  се изократни  
отмиващи  агенти . Ако метанолът /водната  смес  не са подходящи , 
могат  да се опитат  други  органични  разтворители /водни  смеси , 
например  етанол /водна  смес  или ацетонитрил /водна  смес . За 
съединенията , които  се йонизират , за да стабилизират  рН, се 
препоръчва  употребата  на отмиващ  разтвор . Трябва  да се 
полагат  грижи , за да се избегне  утаяването  на солта  и 
влошаване /разваляне  на колоните , което  може  да се случи  с 
някои  органични  фази /буферни  смеси . 
Не могат  да се използват  никакви  добавки  като йон реактив , 
защото  те могат  да повлияят  на свойството  на сорбция  на 
стационарната  фаза . Такива  изменения  на стационарната  фаза  
може  да са необратими . Поради  тази причина  е задължително  
тези експерименти , за които  се използват  добавки , да се 
извършват  в отделна  колона . 
1.7.4.  Разтворими  вещества  
Тестваните  вещества  и веществата  еталони  следва  да се 
разтварят  през мобилната  фаза . 
1.8. ИЗВЪРШВАНЕ  НА ТЕСТА  
1.8.1.  Условия  на извършване  на теста  
Температурата  по време  на измерването  следва  да се записва . 
Използването  на отделна  колона  за контролиране  на 
температурата  се препоръчва  силно , за да се гарантират  
постоянните  условия  по време  на калибриране  и извършването  
на оценка  и измерване  на тестваното  вещество . 
1.8.2.  Определяне  на времето  на престой  t 0 
За определяне  на времето  на престой  t 0 могат  да се използват  
два различни  метода  (вж. точка  1.2).  
1.8.2.1.  Определяне  на времето  на престой  t 0 чрез хомологусни  серии  
За тази процедура  е доказано , че дава надеждни  резултати  и 
стандартизирани  стойности  t 0 . За подробности  вижте  метод  
А.8: коефициент  на разделяне  (n-октанол /вода ), HPLC метод . 
1.8.2.2.  Определяне  на времето  на престой  t 0 чрез инертни  вещества , 
които  не се задържат  чрез колона  
Тази  техника  се основава  на впръскването  на разтворите  от 
формамид , урея  и содни  нитрати . Извършват  се измервания  
поне  два пъти . 
1.8.3.  Определяне  на времето  на задържане  t R 
Веществата  еталони  се избират , както  е описано  в точка  1.3. Те 
могат  да се впръскат  като смесен  стандарт , за да се определи  
тяхното  време  на задържане , при условие  че е било  потвърдено , 
че времето  на задържане  на всяко  вещество  еталон  не е 
повлияно  от присъствието  на други  стандарти  еталони . 
Калибрирането  се извършва  на равни  интервали  поне  два пъти  
на ден с цел да се изчислят  неочакваните  промени  в колоната  за 
изпълнение . За да се потвърди , че времето  на задържане  не се е 
натрупало  и за да се постигне  най-добър  опит , калибрираното  
впръскване  се извършва  преди  и след  впръскването  на 
тестваното  вещество . Веществата  се впръскват  поотделно  в 
колкото  е възможно  по-малко  количество  (за да се избегне  
претрупване  на колоната ) и се определя  тяхното  време  на 
задържане . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1244
 
С цел да се повиши  коефициентът  в измерването , следва  да се 
извършват  поне  две измервания . Стойностите  на log K  oc , 
получени  от индивидуалните  измервания , попадат  в обхвата  на 
0,25 log единици . 
1.8.4.  Оценка  
Факторите  на капацитета  k' се изчисляват  от времето  на престой  
t o и времето  на задържане  t R на избраните  вещества  еталони  в 
съответствие  с уравнение  4 (вж. точка  1.2). Данните  за log k' на 
веществата  еталони  след  това са изобразени  графично  срещу  
техните  log K  oc стойности  от експеримента  за изравняване  на 
партидата , даден  в таблици  1 и 3 от приложението . Следов­  
ателно , използвайки  тази схема , log k' стойността  на тестваното  
вещество  се използва , за да се определи  неговата  log K  oc 
стойност . Ако фактическите  резултати  показват , че log К ос на 
тестваното  вещество  е извън  обхвата  на калибриране , тестът  
следва  да се извърши  отново , като се използват  различни , по- 
подходящи  вещества  еталони . 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Отчетът  трябва  да включва  следната  информация : 
— идентификация  на тестваното  вещество  и веществата  еталони  
и тяхната  чистота , и рК а , ако е необходимо , 
— описание  на оборудването  и условията  на работа , например  
вида  и размера  на аналитичната  (и за безопасност ) колона , 
средствата  за установяване , мобилната  фаза  (съотношение  на 
компонентите  и рН), температура  по време  на измерванията , 
— времето  на престой  и използваният  за неговото  определяне  
метод , 
— количествата  тествано  вещество  и веществата  еталони , 
въведени  в колоната , 
— време  на задържане  на съединенията  еталони , използвани  за 
калибриране , 
— подробности  за съответстващата  линия  на регресия  (log k' в 
съотношение  с log К ос и графиката  на линията  на регресия , 
— средните  данни  за задържането  и изчислената  стойност  d log 
K oc за тестваните  химически  съединения , 
— хроматограми . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) W. J. Lyman, W. F. Reehl, D. H. Rosenblatt (ed). (1990). 
Handbook of chemical property estimation methods, Chap. 4, 
McGraw-Hill, New York.  
(2) J. Hodson, N. A. Williams (1988). The estimation of the 
adsorption coefficient (Koc) for soils by CLIP. Chemosphere, 17, 1—67.
 
(3) G. G. Briggs (1981). Theoretical and experimental relati ­
onships between soil adsorption, octanol-water partition coef ­
ficients, water solubilities, bioconcentration factors, and the 
parachor. J. Agric. Food Chem., 29, pp. 1050—1059.  
(4) C. T. Chiou, P. E. Porter, D.W. Schmedding (1983). Partition 
equilibria of nonionic organic compounds between soil organic matter and water. Environ. Sci. Technol., 17, pp. 227—231.
 
(5) Z. Gerstl, U. Mingelgrin (1984). Sorption of organic subs ­
tances by soils and sediment. J. Environm. Sci. Health, B19, 
pp. 297—312.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1245
 
(6) C. T. Chiou, L. J. Peters, V. H. Freed (1979). A physical 
concept of soil water equilibria for nonionic organic 
compounds, Science, 106, pp. 831—832.  
(7) S. W. Karickhoff (1981). Semi-empirical estimation of sorption 
of hydrophobic pollutants on natural sediments and soils. Chemosphere, 10, pp. 833—846.
 
(8) W. Kördel, D. Hennecke, M. Herrmann (1997). Application of 
the HPLC-screening method for the determination of the 
adsorption coefficient on sewage sludges. Chemosphere, 35(1/2), pp. 121—128.
 
(9) M. Mueller, W. Kördel (1996). Comparison of screening 
methods for the estimation of adsorption coefficients on soil. 
Chemosphere, 32(12), pp. 2493—2504.  
(10) W. Kördel, J. Stutte, G. Kotthoff (1993). HPLC-screening 
method for the determination of the adsorption coefficient in soil-comparison of different stationary phases, Chemosphere, 
27(12), pp. 2341—2352.
 
(11) B. von Oepen, W. Kördel, W. Klein (1991). Sorption of 
nonpolar and polar compounds to soils: Processes, measu ­
rements and experience with the applicability of the modified 
OECD Guideline 106, Chemosphere, 22, pp. 285—304.  
(12) W. Kördel, G. Kotthoff, J. Müller (1995). HPLC-screening 
method for the determination of the adsorption coefficient on soil-results of a ring test. Chemosphere, 30(7), pp. 1373—1384.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1246
 
Приложение  
Таблица  1 
Сравнение  на стойностите  на К ос за почвите  и утайките  и изчислените  стойности  чрез  HPLC скрининг  
метод  ( 1 ), ( 2 ) 
Вещество  CAS номер  log K  oc на 
утайки  от 
отпадни  
води  log K  ос на 
HPLC Δ log K  ос на 
почвата  log K  ос на 
HPLC Δ 
Атразин  1912-24-9 1,66 2,14 0,48 1,81 2,20 0,39 
Линурон  330-55-2 2,43 2,96 0,53 2,59 2,89 0,30 
Фентион  55-38-9 3,75 3,58 0,17 3,31 3,40 0,09 
Монурон  150-68-5 1,46 2,21 0,75 1,99 2,26 0,27 
Фенантрен  85-01-8 4,35 3,72 0,63 4,09 3,52 0,57 
Фенилбензоат  93-99-2 3,26 3,03 0,23 2,87 2,94 0,07 
Бензамид  55-21-0 1,60 1,00 0,60 1,26 1,25 0,01 
4-нитробензамид  619-80-7 1,52 1,49 0,03 1,93 1,66 0,27 
Ацетанилид  103-84-4 1,52 1,53 0,01 1,26 1,69 0,08 
Анилин  62-53-3 1,74 1,47 0,27 2,07 1,64 0,43 
2,5-дихлоранилин  95-82-9 2,45 2,59 0,14 2,55 2,58 0,03  
( 1 ) W. Kördel, D. Hennecke, M. Herrmann (1997). Application of the HPLC-screening method for the determination of the adsorption 
coefficient on sewage sludges. Chemosphere, 35(1/2), 121—128. 
( 2 ) W. Kördel, D. Hennecke, C. Franke (1997). Determination of the adsorption-coefficients of organic substances on sewage sludge s. 
Chemosphere, 35 (1/2), 107—119.  
Таблица  2 
Резултати  от междулабораторния  тест (11 участващи  лаборатории ), извършен , за да подобри  и валидира  
HPLC метода  ( 1 ) 
Вещество  CAS номер  log K  ос K ос log K  ос 
(OECD 106) HPLC  
Атразин  1912-24-9 1,81 78+16 1,89 
Монурон  150-68-5 1,99 100+8 2,00 
Трипентенол  77608-88-3 2,37 292 ±58 2,47 
Линурон  330-55-2 2,59 465 ±62 2,67 
Фентион  55-38-9 3,31 2062 ±648 3,31  
( 1 ) W. Kördel, G. Kotthoff, J. Müller (1995). HPLC-screening method for the determination of the adsorption coefficient on soil- 
results of a ring test. Chemosphere, 30(7), 1373-1384.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1247
 
Таблица  3 
Препоръчани  вещества  еталони  за HPLC екранен  метод , основан  на данните  за адсорбция  на почвата  
Вещество  еталон  CAS номер  Log K  ос е 
стойност  на 
равновесието  Номер  на 
данни  Log S.D. Източник  
Ацетанилид  03-84-4 1,25 4 0,48 (  а ) 
Фенол  108-95-2 1,32 4 0,70 (  а ) 
2-нитробензамид  610-15-1 1,45 3 0,90 (  b ) 
N, N-диметилбензамид  611-74-5 1,52 2 0,45 (  а ) 
4-метилбензамид  619-55-6 1,78 3 1,76 (  а ) 
Метилбензоат  93-58-3 1,80 4 1,08 (  а ) 
Атразин  1912-24-9 1,81 3 1,08 (  c ) 
Изопротурон  34123-59-6 1,86 5 1,53 (  c ) 
3-Нитробензами  д 645-09-0 1,95 3 1,31 (  b ) 
Анилин  62-53-3 2,07 4 1,73 (  а ) 
3,5-Динитробензамид  121-81-3 2,31 3 1,27 (  b ) 
Карбендазим  10605-21-7 2,35 3 1,37 (  c ) 
Триадименол  55219-65-3 2,40 3 1,85 (  c ) 
Триазоксид  72459-58-6 2,44 3 1,66 (  c ) 
Триазофос  24017-47-8 2,55 3 1,78 (  c ) 
Линурон  330-55-2 2,59 3 1,97 (  c ) 
Нафтален  91-20-3 2,75 4 2,20 (  а ) 
Ендосулфан -диол  2157-19-9 3,02 5 2,29 (  c ) 
Метиокарб  2032-65-7 3,10 4 2,39 (  c ) 
Киселина  жълто  219 63405-85-6 3,16 4 2,83 (  а ) 
1,2,3-Трихлорбензол  87-61-6 3,16 4 1,40 (  а ) 
γ-НСН  (линдан ) 58-89-9 3,23 5 2,94 (  а ) 
Фентион  55-38-9 3,31 3 2,49 (  c ) 
Директно  червено  81 2610-11-9 3,43 4 2,68 (  а ) 
Пиразофос  13457-18-6 3,65 3 2,70 (  c ) 
Алфа - ендосулфан  959-98-8 4,09 5 3,74 (  c ) 
диклофопметил  51338-27-3 4,20 3 3,77 (  c ) 
Фенантрен  85-01-8 4,09 4 3,83 (  а ) 
Основно  синьо  41 (смес ) 26850-47-5 
12270-13-2 4,89 4 4,46 (  а ) 
ддт 50-29-3 5,63 1 — (  b ) 
( а ) W. Kördel, J. Müller (1994). Bestimmung des Adsorptionskoeffizienten organischer Chemikalien mit der HPLC. UBA R & D 
Report No. 106 01 044 (1994). 
( b ) B.V. Oepen, W. Kördel, W. Klein. (1991). Chemosphere, 22, 285—304 
( c ) Údaje poskytnuté prumyslem.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1248
 
В.20. ТЕСТ  ЗА ВЪЗПРОИЗВЕЖДАНЕ  НА ГИГАНТСКА  ВОДНА  
БЪЛХА  
1. МЕТОД  
Този  метод  е точно  копие  на ОECD TG 211 (1998).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Първоначалната  цел на теста  е оценяване  въздействието  на 
химикалите  върху  репродуктивната  способност  на Daphnia 
magna  (гигантска  водна  бълха ). 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  И ЕДИНИЦИ  
Родителско  животно : са тези женски  животни  от Daphnia 
magna , които  са представени  в началото  на експеримента  и 
чиято  репродуктивна  способност  е обект  на проучването . 
Поколение : са младите  Daphnia magna , произлезли  от родит­  
елското  животно  по време  на теста . 
Концентрация  на най-ниско  наблюдаваното  въздействие  
(LOEC):  е най-ниската  тествана  концентрация , при която  се 
наблюдава , че веществото  статистически  определено  има знач­  
ително  въздействие  върху  репродуктивната  способност  и 
смъртността  на родителското  животно  (при р < 0,05) в 
сравнение  с контролната  по време  на определено  излагане . 
Обаче  всички  тествани  концентрации  над LOEC трябва  да 
имат  вредно  въздействие , равно  или по-голямо  от това, което  
се наблюдава  при LOEC. Когато  тези две условия  не могат  да 
се изпълнят , трябва  да се даде  пълно  обяснение  за това как 
LOEC (и следователно  NOEC) са били  избрани . 
Концентрация  на ненаблюдавано  въздействие  (NOEC):  това 
е тестваната  концентрация  непосредствено  преди  LOEC, която  в 
сравнение  с контролната  статистически  няма  значително  възде­  
йствие  (при р < 0,05) по време  на определено  излагане . 
ЕС Х : е концентрацията  на тестваното  вещество , разтворено  във 
вода , което  има за резултат  х % намаляване  в репродуктивността  
на Daphnia magna  по време  на определено  излагане . 
Вътрешна  скорост  на увеличаване : е мярка  за растеж  на 
популацията , която  интегрира  репродуктивната  способност  и 
смъртността  (20) (21) (22). При постоянно  състояние  на попул­  
ацията  тя е нула . При нарастваща  популация  е положителна , а 
при намаляваща  популация  е отрицателна . Последната  не е 
устойчива  и накрая  води  до прекратяване . 
Граница  на откриваемост : е най-ниската  концентрация , която  
може  да се открие , но не може  да се определи  количествено . 
Граница  на определяне : е най-ниската  концентрация , която  
може  да се измери  количествено . 
Смъртност : животно , което  е записано  като мъртво , когато  е 
неподвижно , т.е. когато  не е способно  да плува  или ако не се 
наблюдава  движение  на външните  органи  и корема  след  15- 
секундно  леко  разтърсване  на съда  за тестване . (Ако се 
използва  друга  дефиниция , това трябва  да се отчете  заедно  с 
нейната  референция .) ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1249
 
1.3. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  НА ТЕСТВАНЕ  
Млади  женски  животни  Daphnia magna  (родителски  животни ) на 
възраст  по-малко  от 24 часа при започването  на теста  се излагат  на 
тестваното  вещество , прибавено  към водата  при поредица  от 
концентрации . Продължителността  на теста  е 21 дни. В края  на 
теста  се оценява  общият  брой  живо  поколение , произлязло  от 
живо  родителско  животно  в края  на теста . Това  означава , че 
младите  индивиди , произлезли  от възрастните  индивиди , които  
са умрели  по време  на теста , се изключват  от изчисленията . 
Репродуктивната  способност  на родителските  животни  може  да 
се изрази  по друг  начин  (например  броя  на живото  поколение , 
произлязло  от животно  за един  ден от първия  ден, когато  се е 
наблюдавало  поколение ), но тези начини  трябва  да се отчетат  
като допълнение  към общия  брой  от млади  индивиди , произлезли  
от родител , който  е жив в края  на теста . С цел да се определи  
концентрация  на най-ниското  наблюдавано  въздействие  (LOEC) 
и следователно  концентрация  на ненаблюдавано  въздействие  
(NOEC), репродуктивната  способност  на животните , изложени  
на тестваното  вещество , се сравнява  с тази на контролните  
животни . С цел да се оцени  концентрацията , която  би 
причинила  х % намаляване  в репродуктивността  (т.е. ЕС 50 , ЕС 20 
или ЕС 10 ), като допълнение  данните  се анализират  колкото  е 
възможно  по скоро  чрез използване  на модела  на регресия . 
Оцелелите  от родителските  животни  и времето  на появяване  на 
първото  поколение  трябва  да се запише . Други  въздействия  
върху  параметрите , свързани  с веществото , като растеж  
(например  дължина ) и възможна  вътрешна  скорост  на увел­  
ичаване , също  могат  да се изследват . 
1.4. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ТЕСТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Резултатите  от теста  за остра  токсичност  (вж. метод  В.2, част 1), 
извършен  с Daphnia magna , следва  да са на разположение . 
Резултатът  може  да е полезен  при избиране  на подходящ  
обхват  на тестваните  концентрации  при репродуктивния  тест. 
Разтворимостта  във вода  и парното  налягане  при тестваното  
вещество  следва  да са известни  и да е на разположение  
сигурен  аналитичен  метод  за класифициране  на веществото  в 
тествания  разтвор , с отчетена  ефективност  при възстановяване  
и граница  на откриваемост . 
Информацията  за тестваното  вещество , която  може  да е полезна  
при създаване  на условията  за провеждане  на теста , включва  
формула  на структурата , чистота  на веществото , устойчивост  
при светлина , устойчивост  при условията  на теста , рКа, P ow и 
резултатите  от теста  за готовата  биоразложимост  (вж. метод  В.4). 
1.5. ВАЛИДНОСТ  НА ТЕСТА  
За да бъде  тестът  валиден , при контролите  следва  да се изпълнят  
следните  критерии : 
— смъртността  на родителските  животни  (женските  Daphnia 
magna ) да не превишава  20 % в края  на теста , 
— основният  брой  живо  поколение , произлязло  от оцеляло  в 
края  на теста  родителско  животно , да е ≥ 60. 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ТЕСТА  
1.6.1.  Апаратура  
Съдовете  за теста  и другата  апаратура , които  ще влизат  в 
контакт  с тествания  разтвор , следва  да са направени  изцяло  от 
стъкло  или други  инертни  материали . Съдовете  за тестване  
нормално  ще са от устойчиво  стъкло . 
Допълнително  се изисква  част или цялото  оборудване , както  
следва : 
— О 2 метър  (с микроелектрод  или друго  подобно  оборудване  за 
измерване  на разтворения  кислород  в проби  с ниско  колич­  
ество ), ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1250
 
— адекватна  апаратура  за контрол  на температурата , 
— рН метър , 
— оборудване  за определяне  на твърдостта  на водата , 
— оборудване  за определяне  на концентрацията  на органичен  
въглерод  (ТОС ) във водата  или оборудване  за определяне  на 
необходимостта  от химичен  кислород  (COD),  
— адекватно  оборудване  за контрол  на режима  на светлина  и 
измерването  на интензитета  на светлината . 
1.6.2.  Тествани  организми  
Видовете , които  ще се използват  при теста , са видовете  Daphnia 
magna  Щраус . Другите  видове  Daphnia  могат  да се използват , 
при условие  че съответно  отговарят  на критериите  за валидност  
(критериите  за валидност  по отношение  на репродуктивната  
способност  при контролите  са релевантни  за Daphnia  видовете ). 
Ако се използват  други  видове  Daphnia , те трябва  ясно  да се 
идентифицират  и да се посочат  причините  за тяхната  употреба . 
За предпочитане  е клонингът  да се идентифицира  чрез генотипа . 
Проучване  (1) показва , че характеристиката  за репродуктив­  
ността  от клонинг  А (която  произлиза  от IRCHA във Франция ) 
(3) постоянно  отговаря  на критериите  за валидност  посредством  
≥ 60 животни  поколение  на родителско  животно , оцеляло  при 
условията , описани  в този метод . Обаче  други  клонинги  се 
допустими , при условие  че Daphnia  е показала , че отговаря  на 
критериите  за валидност  на теста . 
В началото  на теста  животните  следва  да са на възраст  по-малко  
от 24 часа и не трябва  да са първо  поколение . Те следва  да са 
произлезли  от здраво  стадо  (т.е. такова , което  не показва  
признаци  на стрес , като висока  смъртност , присъствие  на 
мъжки  и ефипия , закъснение  при създаване  на първото  
поколение , безцветни  животни  и т.н.). Стадото  животни  трябва  
да се отглежда  в условия  (светлина , температура , среда , хранене  
и животни  на единица  обем ), подобни  на тези, които  ще се 
използват  при теста . Ако средата  на отглеждане  на Daphnia , 
която  се използва  при теста  е различна  от тази, която  е 
използвана  за обикновеното  отглеждане  на Daphnia , добре  е да 
се включи  преди  теста  един  период  на аклиматизация  от обик­  
новено  три седмици  (т.е. едно  поколение ), за да се избегне  подл­  
агането  на стрес  на родителските  животни . 
1.6.3.  Среда  на извършване  на теста  
Препоръчва  се при този тест да се използва  изцяло  определена  
среда . Това  може  да предотврати  употребата  на добавки  
(например  водорасли , екстракти  от почвата  и т.н.), които  са 
трудни  за характеризиране  и следователно  подобряват  възмож­  
ността  за стандартизиране  между  лабораториите . Създадени  са 
подходящи  за тази цел среди  на Elendt М4 (4) и М7 (вж. 
приложение  1). Обаче  са допустими  и други  среди  (например  
(5) (6), при условие  че отглеждането  на Daphnia  показва , че 
отговаря  на критериите  за валидност  на теста . 
Ако се използват  среди , които  включват  неопределени  добавки , 
тези добавки  следва  да се определят  ясно  и при отчитането  на 
теста  следва  да се предостави  информация  за състава , по- 
специално  с оглед  на съдържанието  на въглерод , тъй като това 
може  да съдейства  при определяне  на хранителния  режим . 
Препоръчва  се общият  органичен  въглерод  (ТОС ) и/или необ­  
ходимият  химичен  кислород  (COD) на основната  подготовка  на 
органичните  добавки  да са опредени  и да е направена  оценка  на 
въздействието  на ТОС  и COD върху  средата , която  се използва  
при теста . При този способ  се препоръчва  ТОС  нивото  (т.е. 
преди  добавянето  на морски  водорасли ) да бъде  под 2 mg/l (7).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1251
 
Когато  се тестват  вещества , съдържащи  метали , е важно  да се 
знае, че свойствата  на тестваната  среда  (например  твърдост , 
способност  за образуване  на хелатен  пръстен ) могат  да 
издържат  токсичността  на тестваното  вещество . Поради  тази 
причина  е желателно  средата  да бъде  напълно  определена . 
Обаче  до момента  единствените  напълно  определени  среди , за 
които  се знае, че са подходящи  за дългосрочно  отглеждане  на 
Daphnia magna,  са средите  на Elendt М4 и М7. И двете  среди  
съдържат  хелатообразуващ  фактор  EDTA ( етилендиаминт­  
етраоцетна  киселина , комплексон  III). Изследванията  са 
показали , че (2) очевидната  токсичност  на кадмия  е най-общо  
по-ниска , когато  тестовете  на репродуктивността  се извършват  
при М4 и М7 среди , в сравнение  със среди , които  не съдържат  
EDTA. Следователно  М4 иМ7 не се препоръчват  за тестване  на 
веществата , които  съдържат  метали , и други  способи , 
съдържащи  известни  хелагообразуващи  фактори , също  трябва  
да се избягват . За веществата , които  съдържат  метали , е 
препоръчително  да се използва  алтернативна  среда , като 
например  ASTM ( Американско  сдружение  за изпитване  и 
изследване  на материалите ) възстанови  твърдата  прясна  вода  
(7), която  не съдържа  EDTA и е с прибавени  екстракти  от 
водорасли  (8). Тази  комбинация  от ASTM, която  възстановява  
твърдата  прясна  вода  и добавени  екстракти  от водорасли , също  е 
подходяща  за продължително  отглеждане  и тестване  на Daphnia 
magna  (2), въпреки  че тя все още проявява  слабо  хелат­  
ообразуващо  действие  заради  органичната  съставка  на доба­  
вените  екстракти  от водорасли . 
В началото  и по време  на теста  концентрацията  на разтворен  
кислород  е над 3 mg/l. РН е в границата  от 6 до 9 и обикновено  
не варира  повече  от 1,5 единици  при всеки  един  тест. 
Препоръчва  се твърдост  над 140 mg/1 ( като СаСО  3 ). Тестове  
при и над тези нива  са показвали , че репродуктивността  е в 
съответствие  с критериите  за валидност  (9) (10).  
1.6.4.  Тествани  разтвори  
Тестваните  разтвори  на избраните  концентрации  обикновено  се 
приготвят  чрез разреждане  на основния  разтвор . Основният  
разтвор  за предпочитане  се приготвя  чрез разреждане  на 
веществото  в средата  за тестване . 
С цел да се приготви  устойчив  концентриран  основен  разтвор , 
може  в някои  случаи  да се наложи  употребата  на органични  
разтворители  или диспергиращи  вещества , но трябва  да се 
положат  всички  усилия , за да се избегне  употребата  на такива  
материали . Примери  на подходящи  разтворители  са ацетон , 
етанол , метанол , диметилформамид  и триетилен  гликол . 
Примери  на подходящи  разпръскващи  вещества  са Cremophor 
RH40, метилцелулоза  0,01 % и НСО -40. Във всички  случаи  
тестваното  вещество  в тествания  разтвор  следва  да не 
превишава  границата  на разтворимост  в тестваната  среда . 
Разтворителите  се използват , за да се получи  основният  разтвор , 
който  може  да се дозира  точно  във водата . С препоръчаната  
концентрация  разтвор  и при финалната  среда  на тестване  (т.е. 
≤ 0,1 ml/1), изброените  по-горе разтвори  не са токсични  и не 
повишават  разтворимостта  във вода  на веществото . 
Разпръскващите  вещества  могат  да подпомогнат  при точното  
дозиране  и разпръскване . При препоръчаната  концентрация  в 
условията  на последния  тест (т.е. ≤ 0,1 ml/1) разпръскващите  
вещества , изброени  по-горе, не са токсични  и не повишават  
разтворимостта  във вода  на веществото . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1252
 
1.7. ПЛАНИРАНЕ  НА ТЕСТА  
Следва  да се определят  съдовете  за теста  и да бъдат  направени  
на случаен  принцип  всички  последващи  манипулации . Неизпъ­  
лнението  на тези действия  може  да доведе  до отклонение , което  
може  да се изтълкува  погрешно  като въздействие  от конце­  
нтрацията . По-специално , ако експерименталните  единици  се 
управляват  по реда  на обработката  и концентрацията , тогава  
някои  ефекти , относими  към времето , като умората  на 
оператора  или други  грешки , могат  да доведат  до по-големи  
въздействия  при по-високите  концентрации . Нещо  повече , ако 
е вероятно  резултатите  от теста  да са повлияни  от първонач­  
алните  условия  или условията  на околната  среда  по време  на 
теста , такива  като местонахождение  на лабораторията , следва  да 
се помисли  за спиране  на теста . 
1.8 ПРОЦЕДУРА  
1.8.1.  Условия  на експозиция  
1.8.1.1.  Продължителност  
Тестът  продължава  21 дни. 
1.8.1.2.  Зареждане  
Родителските  животни  се обслужват  индивидуално , едно  за един  
съд за тестване , с 50 — 100 ml от средата  на всеки  съд. 
За да се постигнат  изискванията  на аналитичната  процедура , 
използвана  при определяне  на концентрацията  тествано  
вещество , понякога  може  да са необходими  по-големи  обеми , 
въпреки  че е допустимо  и обединяването  на дублиращите  
съдове  за химически  анализи . Ако се използва  количество , по- 
голямо  от 100 ml, може  да се наложи  да се повиши  съотнош­  
ението , дадено  за Daphnia , за да се гарантира  достатъчен  достъп  
на храна  и съответствие  с критериите  за валидност . За 
потоковите  тестове  може  да се помисли  за алтернативно  
планиране , по технически  причини , (например  четири  групи  от 
10 животни  в по-голям  обем ), но следва  да бъдат  отчитани  
всякакви  промени  в планирането  на теста . 
1.8.1.3.  Брой  животни  
За полустатичните  тестове  се използват  най-малко  10 животни , 
разделени  поотделно  за всяка  тествана  концентрация , и най- 
малко  10 животни , разделени  поотделно  в контролните  серии . 
За потоковите  тестове  се установява  за уместно  да се използват  
40 животни , разделени  на четири  групи  от 10 животни  за всяка  
тествана  концентрация  (1). По-малък  брой  от тествани  
организми  може  да се използва  и се препоръчва  минимум  20 
животни  за концентрация , разделени  на две или повече  
контролни  групи  с равен  брой  животни  (например  четири  
контролни  групи , като всяка  съдържа  пет водни  бълхи ). За 
отбелязване  е, че за тестове , където  животните  са държани  в 
групи , ако родителското  животно  умре , няма  да е възможно  да 
се отчете  репродуктивната  способност  като общ брой  оцеляло  
поколение , произлязло  от родителско  животно , което  е живо  в 
края  на теста . В тези случаи  репродуктивната  способност  се 
изразява  като общ брой  живо  поколение , произлязло  от родит­  
елите , които  са били  живи  в началото  на теста . 
1.8.1.4.  Хранене  
За полустатичните  тестове  храненето  за предпочитане  се прави  
дневно , но поне  три пъти  на седмица  (т.е. съответстващи  на 
измененията  в средата ). Отклоненията  от това (например  за 
потоковите  тестове ) следва  да бъдат  отчитани . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1253
 
По време  на теста  хранителният  режим  на родителските  животни  
за предпочитане  са живи  клетки  от морски  водорасли  или едно  
или повече  от следните : Chorella  sp, Selenastrum capricornutum  
(сега Pseudokichneriella subcapitata  (11) и Scenedesmus subspicatus . 
Хранителният  режим , който  се прилага , следва  да се основава  на 
количеството  органичен  въглерод  (С), осигурен  за всяко  
родителско  животно . Проучванията  (12) показват , че за Daphnia 
magna  нива  на съотношение  между  0,1 и 0,2 mg C/ Daphnia /ден са 
достатъчни  за получаването  на изисквания  брой  поколение , за да 
се покрият  критериите  за валидност  на теста . Съотношението  
може  да се получи  или при постоянна  пропорция  по време  на 
теста , или, ако е желателно , може  да се използва  по-ниска  
пропорция  в началото  на теста , която  да се повиши  по време  на 
извършването  на теста , като се вземе  предвид  растежът  на родит­  
елските  животни . В този случай  съотношението  все още остава  в 
препоръчания  обхват  от 0,1 — 0,2 mg C/ Daphnia /ден по всяко  
време . 
Ако за да се поддържа  изискваното  ниво  на съотношение  (т.е. за 
удобство , тъй като измерването  на органичния  въглерод  изисква  
време ) трябва  да се използват  заместващи  мерки , такива  като 
брой  на клетките  от морски  водорасли  или слаба  адсорбция , 
всяка  лаборатория  трябва  да има собствена  номограма , която  
се отнася  до заместващия  начин  на измерване  на органичния  
въглерод  на морските  водорасли  (вж. приложение  2 за съвети  
при създаването  на номограма ). Номограмите  се проверяват  
поне  веднъж  годишно  и по-често , ако условията  за отглеждане  
на морските  водорасли  са се променили . Установено  е, че слаба  
адсорбция  е по-добър  заместител  на съдържанието  на въглерод , 
отколкото  броят  на клетките  (13).  
За да се минимизира  количеството  отглеждани  морски  
водорасли , прехвърлени  в съдовете  за тестване , за Daphnia  се 
поддържа  концентрирана  суспензия  на морските  водорасли . 
Концентрацията  на морските  водорасли  може  да се постигне  
чрез центрофуга , последвана  от ресуспензия  на дестилирана  
вода , дейонизирана  вода  или среда  на Daphnia  културата . 
1.8.1.5.  Светлина  
16 часа светлина  при интензитет , непревишаващ  
15 — 20 μΕ m -2 s -1 
1.8.1.6.  Температура  
Температурата  на средата , при която  се извършва  тестът , е в 
граници  от 18 — 20  o С. Обаче  за всеки  един  тест температурата  
не следва  да се изменя , ако е възможно , с повече  от 2 o С извън  
тези ограничения  (например  18 — 20, 19 — 21 или 20 — 22  o С). 
Може  да е подходящо  използването  на допълнителни  съдове  за 
теста  за целите  на мониторинга  на температурата . 
1.8.1.7.  Проветряване  
По време  на теста  съдовете  не се проветряват . 
1.8.2.  Тествана  концентрация  
Обикновено  следва  да са налични  поне  пет тествани  конце­  
нтрации , подредени  в геометрични  серии  с фактор  на разделяне , 
за предпочитане  не превишаващ  3,2, и се използва  подходящият  
брой  контроли  за всяка  тествана  концентрация  (вж. точка  
1.8.1.3). Посочват  се причините  за използването  на по-малко  
от пет концентрации . Не се тестват  вещества  над тяхната  
граница  на разтворимост  в тестваната  среда . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1254
 
При определяне  границите  на концентрация  се взема  предвид  
следното : 
i) ако целта  е постигане  на LOEC/NOEC, най-ниската  конце­  
нтрация  трябва  да е достатъчно  ниска , така че плодовитостта  
при тази концентрация  да не е значително  по-ниска  от тази 
при контролната . Ако случаят  не е такъв , тестът  трябва  да се 
повтори  с намалена  най-ниска  концентрация ; 
ii) ако целта  е постигане  на LOEC/NOEC, най-високата  конце­  
нтрация  трябва  да е достатъчно  висока , така че плодов­  
итостта  при тази концентрация  да е значително  по-ниска  
от тази при контролната . Ако случаят  не е такъв , тестът  
трябва  да се повтори  с повишена  най-висока  концентрация ; 
iii) ако е изчислено  ЕС Х за въздействието  върху  репродуктив­  
ността , се препоръчва  да се използват  достатъчни  конце­  
нтрации , за да се определи  ЕС Х с подходящо  ниво  на 
увереност . Ако е изчислено  ЕС 50 за въздействието  върху  
репродуктивността , се препоръчва  най-високата  конце­  
нтрация  да е по-висока  от тази ЕС 50 . Иначе , въпреки  че 
все пак е възможно  да се изчисли  ЕС 50 , интервалът  на 
увереност  по отношение  на ЕС 50 е много  широк  и няма  да 
е възможно  да се оцени  задоволително  приложимостта  на 
съответния  модел ; 
iv) границите  на тестваната  концентрация  е за предпочитане  да 
не включват  никакви  концентрации , които  статистически  
имат  значително  въздействие  върху  оцеляването  на 
възрастните  индивиди , тъй като това би променило  
природата  на теста  от обикновен  тест за репродуктивност  
до сложен  тест за репродуктивност  и смъртност , изискващ  
много  повече  сложни  статистически  анализи . 
Предварителните  познания  за токсичността  на тестваното  
вещество  (например  от акутен  тест и/или от сведения  от 
проучвания  на обхвата ) ще помогнат  при избора  на 
подходящи  концентрации  за изследване . 
Където  се използва  разтвор  или разпръскващо  вещество , за да се 
подпомогне  разтворът  за тестване  (вж. точка  1.6.4), неговата  
последна  концентрация  в съда  за тестване  не следва  да е по- 
висока  от 0,1 ml/1 и следва  да е една  и съща  във всички  
съдове  за тестване . 
1.8.3.  Контроли  
Допълнително  към сериите  от теста , по средата  на теста  се 
използва  една  контролна  серия  и също , ако е уместно , една  
контролна  серия , съдържаща  разтвор  или разпръскващо  
вещество . Когато  се използва  такава  серия , концентрацията  на 
разтворителя  или на разпръскващото  вещество  следва  да е 
същата  като използваната  в съда , съдържащ  тестваното  
вещество . Използват  се подходящ  брой  дублиращи  серии  (вж. 
точка  1.8.1.3).  
Най-общо , при добре  проведените  тестове  коефициентът  на 
променливост  спрямо  основния  брой  живо  поколение , прои­  
злязло  от едно  родителско  животно  в контролната (ите) 
серия (и), следва  да бъде  ≤ 25 и това се отчита , при планирането  
на теста  чрез използване  на самостоятелно  отглеждани  животни . 
1.8.4.  Възстановяване  на средата  за тестване  
Честотата  на възстановяването  на средата  зависи  от устойчи­  
востта  на тестваното  вещество , но това следва  да бъде  поне  
три пъти  на седмица . Ако от предварителните  тестове  за усто­  
йчивост  (вж. точка  1.4), концентрацията  тествано  вещество  не е 
стабилна  (т.е. е извън  обхвата  от 80 — 120 % от номинала  или 
пада  под 80 % от измерената  първоначална  концентрация ) за по- 
дълго  време  от максималния  период  на възстановяване  (т.е. три 
дни), се вземат  мерки  за по-често  възстановяване  на средата  или 
за използване  на потоков  тест. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1255
 
Когато  средата  се е възстановила  при полустатичните  тестове , се 
подготвя  втора  серия  от съдове  за тестване  и родителските  
животни  се прехвърлят  в тях чрез например  стъклена  пипета  с 
подходящ  диаметър . Количеството  прехвърлена  среда  с Daphnia  
се минимизира . 
1.8.5.  Наблюдения  
Резултатите  от наблюденията , направени  по време  на теста , се 
записват  върху  таблици  (вж. примерите  в приложения  3 и 4). 
Ако се изискват  други  измервания  (вж. 1.3 и 1.8.8), се правят  
допълнителни  наблюдения . 
1.8.6.  Поколение  
За да не се консумира  храната , предназначена  за възрастния  
индивид , поколението , произлязло  от едно  родителско  
животно , е за предпочитане  да се отстранява  и всекидневно  да 
се преброява  след  появяването  на първото  потомство . За целите  
на този метод  се преброява  само  живото  поколение , но 
наличието  на недоразвити  яйца  или мъртво  поколение  също  
следва  да бъде  отчитано . 
1.8.7.  Смъртност  
За предпочитане  е смъртността  между  родителските  животни  да 
се записва  всеки  ден поне  по едно  и също  време  с времето , 
когато  се преброява  поколението . 
1.8.8.  Други  параметри  
Въпреки  че този метод  принципно  е планиран  да оценява  възде­  
йствието  върху  репродуктивността , е възможно  задоволително  
да се определят  и други  въздействия , за да се позволи  статист­  
ически  анализ . Желателно  е измерване  на растежа , тъй като се 
набира  информация  за възможните  сублетални  въздействия , 
които  може  да са по-полезни , отколкото  измерването  само  на 
репродуктивността ; препоръчва  се в края  на теста  да се измери  
дължината  на родителските  животни  (т.е. дължината  на тялото , 
като се изключи  краят  на гръбнака ). Други  параметри , които  
могат  да се измерват  или изчисляват , са времето  за 
произвеждане  на първото  поколение  (и следващите ), броят  и 
размерът  на поколението  по животни , броят  на неразвитото  
поколение , наличието  на мъжки  или ефипии  и присъщата  
скорост  на повишаване  на популацията . 
1.8.9.  Честота  на аналитичните  определяния  и измервания  
Поне  веднъж  в седмицата  се измерват  стойностите  на конце­  
нтрацията  на кислород , температурата , твърдостта  и рН, в 
прясна  и стара  среда , в контролите  и при най-високата  конце­  
нтрация  на тестваното  вещество . 
По време  на теста  концентрацията  на тестваното  вещество  се 
определя  на равни  интервали . 
При полустатичните  тестове , където  концентрацията  на 
тестваното  вещество  се очаква  да остане  в рамките  на ± 20 % 
от номинала  (т.е. в обхвата  80 — 120 % — вж. 1.4 и 1.8.4), се 
препоръчва  да се анализират  като минимум  най-високата  и най- 
ниската  концентрация  на тестване , когато  са току -що приг­  
отвени  и по време  на възстановяването  през първата  седмица  
на теста  (т.е. прави  се анализ  на пробите  от същия  разтвор  — 
когато  са току -що приготвени  и при възстановяването ). След  
това се повтарят  на интервали  от поне  една  седмица . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1256
 
За тестове , където  концентрацията  на тестваното  вещество  не се 
очаква  да остане  под ± 20 % от номинала , е необходимо  да се 
анализират  всички  концентрации  на тестване , когато  са току -що 
приготвени  и при възстановяване . Обаче  за тези тестове , където  
измерената  първоначална  концентрация  на тестваното  вещество  
не е ± 20 % от номинала , но има достатъчно  доказателства , 
които  показват , че първоначалните  концентрации  са повторяеми  
и устойчиви  (т.е. в обхвата  от 80 — 120 % от първоначалната  
концентрация ), се намалява  определянето  на химикалите  от 
втората  и третата  седмица  на теста  до най-високата  и най- 
ниската  тествана  концентрация . Във всички  случаи  
определянето  на концентрацията  тествано  вещество  се 
извършва  само  при дублиращия  съд за всяка  тествана  конце­  
нтрация , преди  възстановяването . 
Ако е ползван  потоков  тест, е подходящ  режим  на пробите , 
подобен  на този, описан  за полустатичните  тестове  (но 
измерването  на стари  разтвори  не се прилага  в този случай ). 
Обаче  е препоръчително  да се увеличи  броят  на вземането  на 
проби  по време  на първата  седмица  (например  три измервания ), 
за да се гарантира , че тестваните  концентрации  остават  усто­  
йчиви . При тези видове  тестове  дебитът  на разтворителя  и 
тестваното  вещество  се проверяват  всеки  ден. 
Ако има доказателство , че концентрацията  тествано  вещество , 
която  се изследва , е била  задоволително  поддържана  в ± 20 % от 
номинала  или измерената  първоначална  концентрация  по време  
на теста , то резултатите  могат  да се основават  на номинала  или 
на измерените  първоначални  стойности . Ако отклонението  от 
номинала  или измерената  първоначална  концентрация  е по- 
голямо  от ± 20 %, резултатите  се изразяват  с оглед  на 
натовареното  средно  време  (вж. приложение  5). 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Целта  на този тест е да се определи  въздействието  на тестваното  
вещество  върху  общия  брой  живо  поколение  за едно  родителско  
животно , което  е останало  живо  до края  на теста . Общият  брой  
живо  поколение  за едно  родителско  животно  се изчислява  за 
всеки  съд за тестване  (т.е. дублиращ ). Ако при някои  от 
дублиращите  съдове  по време  на теста  родителското  животно  
умре  или се окаже  мъжки  индивид , то дублиращото  животно  
се изключва  от анализа . Анализът  тогава  ще се основава  на 
намаления  брой  дублиращи  животни . 
За оценяването  на LOEC и следователно  NOEC за въздействието  
на химикала  върху  репродуктивната  способност  е необходимо  
да се изчисли  основната  репродуктивна  способност  между  
дублиращите  за всяка  концентрация  и свързаните  остатъчни  
стандартни  отклонения  и това може  да бъде  направено , като 
се използва  анализът  на променливостта  (ANOVA). Средната  
стойност  на всяка  тествана  концентрация  трябва  следователно  
да се сравни  с контролната  средна  стойност , като се използва  
подходящ  метод  за многократно  сравняване . Тестовете  на Дънет  
и Уилям  могат  да се използват  (14) (15) (16) (17). Необходимо  е 
да се провери  дали  ANOVA предположение  за хомогенност  на 
променливостта  се запазва . Препоръчва  се това да се направи  
по-скоро  графично , отколкото  чрез тест за формална  значимост  
(18); подходяща  алтернатива  е тестът  на Барлет . Ако това предп­  
оложение  не издържи , тогава  се предпочита  преобразуването  на 
данните  за променливост  на хомогенността  пред  извършването  
на ANOVA или утежнена  ANOVA. Размерът  на въздействието , 
което  се определя  чрез използването  на ANOVA 
(т.е. последната  значителна  разлика ), се изчислява  и отчита . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1257
 
За оценка  на концентрацията , която  причинява  50 % намаляване  
на репродуктивната  способност  (т.е. ЕС 50 ), подходяща  крива , 
например  логистична  крива , следва  да е съобразена  с данните  
чрез използване  на статистическия  метод , като например  
последните  квадрати . Параметрите  на кривата  се определят , 
така че ЕС 50 и неговите  статистически  грешки  да могат  да се 
оценят  директно . Това  много  ще улесни  изчисляването  на 
границата  на сигурност  за ЕС 50 . Освен  ако няма  основание  да 
бъдат  предпочетени  различни  граници  на сигурност , позова­  
ването  следва  да се прави  при двустранни  95 % граници  на 
сигурност . Съответстващата  процедура  преди  всичко  предоставя  
средството  за оценка  на значимостта  на липсата  на съответствие . 
Това  може  да се направи  графично  или чрез разделяне  на 
остатъчната  сума  от квадрата  в „липсата  на съответствие “ и 
„компоненти  на чиста  грешка “ и извършване  на специален  
тест за липса  на съответствие . Тъй като за обработките , които  
дават  висока  плодовитост , е възможно  да има голяма  проме­  
нливост  в броя  на произлезлите  млади  индивиди , отколкото  
обработките , които  дават  ниска  плодовитост , за да се отрази  
на различната  променливост  при различните  третирани  групи , 
се предпочита  компенсиране  на наблюдаваните  стойности  (вж. 
за основна  информация  използвана  литература  (18)).  
При анализа  на данни  от последния  кръгов  тест (2) логистичната  
крива  се пригодява , като се използва  следният  модел , въпреки  
че може  да се използват  и други  подходящи  модели : 
Y ¼ c 
1 þ x 
x 0 Í Î  b 
където : 
Y = общият  брой  млади  индивиди  за родителско  животно , 
което  е живо  в края  на теста  (изчислени  за всеки  съд) 
х = концентрация  на веществото  
с = очакван  брой  млади  организми , когато  х = 0  
х о = ЕС 50 в популацията  
b = параметри  на наклона  
Този  модел  е вероятно  да бъде  адекватен  на голям  брой  
ситуации , но все пак ще има тестове , за които  няма  да е 
подходящ . Следва  да се прави  проверка  на валидността  на 
модела , както  бе предложено  по-горе. В някои  случаи  може  да 
е подходящ  хормезен  модел , при който  ниските  концентрации  
дават  засилени  ефекти  (19).  
Други  концентрации , които  оказват  въздействие , като ЕС 10 и 
ЕС 20 , също  могат  да се изчисляват , въпреки  че може  да се 
предпочете  използването  на различни  параметри  на модела  от 
тези, които  са използвани  за изчисляване  на ЕС 50 . 
2.2. ОТЧИТАНЕ  НА ТЕСТА  
При отчитане  на теста  се включва  следното : 
2.2.1.  Тествано  вещество  
— физическа  природа  и съответните  физикохимични  свойства , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1258
 
— данни  за химическата  идентификация , включително  чистота . 
2.2.2.  Тествани  видове  
— клонинг  (независимо  от това дали  е генетичен  вид), 
доставчик  и източник  (ако е известен ) и използваните  
условия  за отглеждане . Ако се използват  видове , различни  
от Daphnia magna , това се отчита  и се посочват  причините  за 
това. 
2.2.3.  Условия , при които  се извършва  теста  
— използваната  при теста  процедура  (т.е. полустатична  или 
потокова , количество , зареждане  на брой  Daphnia  за литър ), 
— период  на излагане  и интензитет  на светлината , 
— планиране  на теста  (т.е. брой  на дубликатите , брой  на 
родителите  спрямо  дубликатите ), 
— подробности  за използваната  среда  за отглеждане , 
— ако са използвани , добавки  от органични  материали , включ­  
ително  структура , източник , метод  на приготвяне , TOC/COD 
на основния  разтвор , оценка  на резултатите  на TOC/COD в 
тестваната  среда , 
— подробна  информация  за храненето , включително  колич­  
еството  (в mg C/ Dapnia /ден) и разписанието  (например  
вида  на храната , включително  характерното  название  на 
морските  водорасли  и, ако се знае, рода , условията  на 
отглеждане ), 
— метода  на подготовка  на основните  разтвори  и честотата  на 
подновяване  (ако се използват  разтвор  и разпръскващо  
вещество , те трябва  да са дадени , както  и тяхната  конце­  
нтрация ). 
2.2.4.  Резултати : 
— резултатите  от всички  предварителни  проучвания  върху  
устойчивостта  на тестваното  вещество , 
— номиналните  тествани  концентрации  и резултатите  от всички  
анализи , за да се определи  концентрацията  на тестваното  
вещество  в съд за тестване  (вж. пример  на таблица  с данни  
в приложение  4); отчитат  се също  ефикасността  на метода  за 
възстановяване  и границата  на определеност , 
— качество  на водата  в съда  за тестване  (т.е. рН, температура  и 
концентрация  на разтворения  кислород  и ТОС  и/или COD и 
твърдост , където  е необходимо ) (вж. пример  на таблица  в 
приложение  3), 
— целият  записан  брой  живо  поколение  спрямо  всяко  
родителско  животно  (вж. таблицата  в приложение  3), 
— брой  на мъртвите  сред  родителските  животни  и денят , в 
който  това се е случило  (вж. таблицата  в приложение  3), 
— коефициент  на променливост  за контрол  на плодовитостта  
(основан  на общия  брой  живо  поколение  за родителско  
животно , което  е останало  живо  в края  на теста ), 
— графика  на общия  брой  живо  поколение  на родителско  
животно  (за всяка  дублираща  група ), което  е останало  
живо  в края  на теста , по отношение  на концентрацията  на 
тестваното  вещество , 
— най-ниско  наблюдавано  въздействие  на концентрация  LOEC 
за репродуктивността , включително  описание  на 
използваните  статистически  процедури  и индикация  за 
това, каква  големина  на въздействие  може  да се определи  
и ненаблюдавано  въздействие  на концентрация  NOEC за 
репродуктивността ; където  това е подходящо ; отчита  се и 
LOEC/NOEC за смъртността  на родителските  животни , ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1259
 
— където  е подходящо , ЕС Х за репродуктивността  и 
интервалите  на сигурност  и графика  за съответния  модел , 
използван  за изчисляване , наклон  на кривата  за реакция  
спрямо  дозата  и стандартната  грешка , 
— други  наблюдавани  биологически  ефекти  или измервания : 
отчитане  на всички  други  биологични  ефекти , които  са 
били  наблюдавани  или измервани  (например  растеж  на 
родителското  животно ), включително  и съответното  обос­  
новаване , 
— обяснение  за всички  отклонения  от метода  на теста . 
3. ПРЕПРАТКИ  
(1) OECD Test Guideline Programme, Report of the Workshop on 
the Daphnia magna  Pilot Ring Test, Sheffield University, UK, 
20—21 March 1993.  
(2) OECD Environmental Health and Safety Publications. Series 
on Testing and Assessment No. 6. Report of the Final Ring 
Test of the  Daphnia magna  Reproduction Test Paris. 1997.  
(3) Baird D. J., Barber J., Bradley M. C, Soares A. M. V. M. and 
Calow P. (1991). A comparative study of genotype sensitivity 
to acute toxic stress using clones of  Daphnia magna  Strauss. 
Ecotoxicology and Environmental Safety, 21, pp. 257—265.  
(4) Elendt B. P., (1990). Selenium deficiency in Crustacea; An 
ultrastructural approach to antennal damage in  Daphnia 
magna  Straus. Protoplasma, 154, pp. 25—33.  
(5) EPA (1993). Methods for Measuring the Acute Toxicity of 
Effluents and Receiving Waters to Freshwater and Marine Organisms. (Fourth ed.). EPA/600/4-90/027F. C. I. Weber (ed), USEPA, Cincinnati, Ohio.
 
(6) Vigano L., (1991) Suitability of commercially available spring 
waters as standard medium for culturing  Daphnia magna.  Bull. 
Environ. Contam. Toxicol., 47, pp. 775—782.  
(7) ASTM (1988). Standard Guide for Conducting Acute Toxicity 
Tests with Fishes, Macroinvertebrates and Amphibians. E729- 88a. American Society for Testing and Materials, Philadelphia P.A. 20 pp.
 
(8) Baird D. J., Soares A. M. V. M., Girling A., Barber J., Bradley 
M. C. and Calow P. (1989). The long term maintenance of  
Daphnia magna  Straus for use in ecotoxicological tests; 
problems and prospects. In: Proceedings of the 1st European Conference on Ecotoxicology. Copenhagen 1988 (H. Løkke, 
H. Tyle & F. Bro-Rasmussen. Eds.), pp. 144—148.
 
(9) Parkhurst B. R., Forte J. L. and Wright G. P. (1981). Repro ­
ducibility of a life-cycle toxicity test with  Daphnia magna.  
Bull. Environ. Contam. and Toxicol., 26, pp. 1—8.  
(10) Cowgill U. M. and Milazzo D. P. (1990) The sensitivity of two 
cladocerans to water quality variables: salinity and hardness. Arch. Hydrobiol., 120(2), pp. 185—196.
 
(11) Korshikov (1990).  Pseudokirchneriella subcapitata  Hindak, F- 
1990. Biologice Prace, 36, 209.  
(12) Sims I. R., Watson S. and Holmes D. (1993). Toward a 
standard  Daphnia  juvenile production test. Environmental 
Toxicology and Chemistry, 12, pp. 2053—2058.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1260
 
(13) Sims I. (1993). Measuring the growth of phytoplankton: the 
relationship between total organic carbon with three commonly 
used parameters of algal growth. Arch. Hydrobiol., 128, pp. 459—466.
 
(14) Dunnett C. W., (1955). A multiple comparisons procedure for 
comparing several treatments with a control. J. Amer. Statist. 
Assoc, 50, pp. 1096—1121.  
(15) Dunnett C. W., (1964). New tables for multiple comparisons 
with a control. Biometrics, 20, pp. 482—491.  
(16) Williams D. A. (1971). A test for differences between 
treatment means when several dose levels are compared with 
a zero dose control. Biometrics 27, pp. 103—117.  
(17) Williams D. A. (1972). The comparison of several dose levels 
with a zero dose control. Biometrics, 28, pp. 510—531.  
(18) Draper N. R. and Smith H. (1981). Applied Regression 
Analysis, second edition, Wiley, N.Y.  
(19) Brain P. and Cousens R. (1989). An equation to describe dose 
responses where there is stimulation of growth at low doses. 
Weed Research, 29, pp. 93—96.  
(20) Wilson E. O. and Bossert, W. H. (1971). A Primer of Popu ­
lation Biology. Sinauer Associates Inc. Publishers.  
(21) Poole R. W. (1974). An Introduction to quantitative Ecology. 
McGraw-Hill Series in Population Biology, New York, 
pp. 532.  
(22) Meyer J. S., Ingersoll C. G., McDonald L. L. and Boyce M. S. 
(1986). Estimating uncertainty in population growth rates: Jackknife vs bootstrap techniques. Ecology, 67, 
pp. 1156—1166.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1261
 
Приложение  1 
ПОДГОТОВКА  HA НАПЪЛНО  ОПРЕДЕЛЕНАТА  СРЕДА  HA 
ELENDT М7 И M4 
Аклиматизация  към средите  на Elendt M7 и M4 
Някои  лаборатории  срещат  трудности  при директното  прехвърляне  на 
Daphnia  към среди  М4 (1) и М7. Обаче  са постигнати  някои  успехи  при 
постепенната  аклиматизация , т.е. преместване  от една  среда  от 30 % Elendt 
към 60 % Elendt и след  това към 100 % Elendt. Може  да се наложи  
периодите  на аклиматизация  да бъдат  дълги  по един  месец . 
ПОДГОТОВКА  
Елементи  с микроконцентрация  
Първо  във вода  със съответната  чистота , т.е. дейонизирана , дестилирана  и 
обратна  осмоза , се приготвят  отделени  основни  разтвори  (I) от 
индивидуални  елементи  с микроконцентрация . От тези различни  основни  
разтвори  (I) се приготвя  втори  отделен  основен  разтвор , който  съдържа  
всички  елементи  с микроконцентрация  (комбиниран  разтвор ), т.е.: 
Основни  разтвори  I 
(единично  вещество ) Количество , 
прибавено  към 
водата  
(mg/l) Концентрация  
(взависимост  от 
средата  М4) 
(на част) За приготвяне  на комбиниран  основен  
разтвор  II добавете  следното  
количество  основен  разтвор  I към 
водата  
(ml/l) 
М4 М7 
H 3 BO 3 57 190 20 000 1,0 0,25 
MnCl  2 4H 2 O 7 210 20 000 1,0 0,25 
LiCl 6 120 20 000 1,0 0,25 RbCl 1 420 20 000 1,0 0,25 SrCl
 2 6H 2 O 3 040 20 000 1,0 0,25 
NaBr 320 20 000 1,0 0,25 Na
 2 MoO  4 2H 2 O 1 260 20 000 1,0 0,25 
CuCl  2 2H 2 O 335 20 000 1,0 0,25 
ZnCl  2 260 20 000 1,0 1,0 
CoCl  2 6H 2 O 200 20 000 1,0 1,0 
KI 65 20 000 1,0 1,0 Na
 2 SeO  3 43,8 20 000 1,0 1,0 
NH  4 VO  3 11,5 20 000 1,0 1,0 
Na 2 EDTA 2H  2 O 5 000 2 000 — — 
FeSO  4 VH  2 O 1 991 2 000 — — 
И при разтвор  на Na  2 EDTA, и при разтвор  на FeSO  4 разтворите  се приготвят  отделно , изливат  се заедно  и 
незабавно  се автоклавират . Това  дава: 
2l разтвор  на Fe-EDTA 1 000 на част 20,0 5,0  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1262
 
Среди  М4 и М7 
Средите  М4 и М7 се приготвят  чрез използване  на основен  разтвор  II, 
макронутриенти  и витамини , както  следва : 
Количество , 
прибавено  към 
водата  
(mg/l) Концентрация  
(взависимост  от 
средата  М4) 
(на част) Количество  основен  разтвор , 
прибавено  към средата  
(ml/l) 
М4 М7 
Съчетани  микроелементи  основен  
разтвор  II 20 50 50 
Основен  разтвор  с макронутриенти  (единично  вещество ) 
CaCl  2 2H 2 O 293 800 1 000 1,0 1,0 
MgSO  4 7H 2 O 246 600 2 000 0,5 0,5 
KCl 58 000 10 000 0,1 0,1 NaHCO
 3 64 800 1 000 1,0 1,0 
Na 2 SiO  3 9H 2 O 50 000 5 000 0,2 0,2 
NaNO  3 2 740 10 000 0,1 0,1 
KH  2 PO 4 1 430 10 000 0,1 0,1 
K 2 HPO  4 1 840 10 000 0,1 0,1 
Комбиниран  разтвор  на витамини  — 10 000 0,1 0,1 
Комбинираният  разтвор  на витамини  се приготвя  чрез прибавяне  на 3 витамина  към 1 l вода , както  е показано  
по-долу : 
Тиамин  хидрохлорид  750 10 000 — — 
Цианокобаламин  (B 12 ) 10 10 000 — — 
Биотин  7,5 10 000 — —  
Комбинираният  разтвор  на витамини  се съхранява  замразен  на малки , съразмерни  части . Малко  преди  употреба  се добавят  
витамините  към средата . 
Бележки : За да се избегне  утаяването  на соли , когато  се приготвя  цялата  среда , се прибавя  съразмерна  част от основния  разтвор  
от около  500 — 800 ml дейонизирана  вода  и след  това се допълва  до 1 l. 
Първото  публикуване  на среда  М4 може  да се намери  при Elendt (1990). Selenium deficiency in crustacea; an ultrast ­
ructural approach to antennal damage in  Daphnia magna  Straus. 154, 25—33.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1263
 
Приложение  2 
АНАЛИЗ  HA ОБЩИЯ  ОРГАНИЧЕН  ВЪГЛЕРОД  (TOC) И 
СЪЗДАВАНЕ  HA НОМОГРАМА  ЗА TOC СЪДЪРЖАНИЕ  HA 
ХРАНАТА  OT МОРСКИ  ВОДОРАСЛИ  
Приема  се, че съдържанието  на въглерод  в храната  от морски  водорасли  
обикновено  не се измерва  директно , а от корелациите  (т.е. номограмите ) със 
заместващи  мерки , такива  като броя  на клетките  морски  водорасли  или 
адсорбцияТА  на светлина . 
TOC се измерва  по-скоро  чрез високотемпературно  окисляване , отколкото  
чрез UV или персулфатни  методи  (вж. Инструментално  определяне  на 
общия  органичен  въглерод , общия  нужен  кислород  и съответните  
детерминанти  1979, The Instrumental Determination of Total Organic Carbon, 
Total Oxygen Demand and Related Determinands 1979, HMSO 1980; 49 High Holborn, London WC1V 6HB).
 
За създаване  на номограмата  водораслите  следва  да се отделят  от средата  на 
растеж  чрез центрофуга , след  което  следва  ресуспензия  в дестилирана  вода . 
Измерват  се параметрите  заместители  и TOC концентрацияТА  във всички  
проби  по три екземпляра . Празните  проби  с дестилираната  вода  се 
анализират  и TOC концентрацията  се изважда  от TOC концентрацията  на 
пробите  от морски  водорасли . 
Номографията  е линеаРна  при изисквания  обхват  на концентрацията  от 
въглерод . Примерите  са показани  по-долу . 
NB: Te следва  да не се използват  за конверсия ; необходимо  е лабораториите  
да приготвят  техни  собствени  номограми .
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1264
 
▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1265
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1266
 ▼B 
Приложение  3 
ПРИМЕРНА  ТАБЛИЦА  ЗА ЗАПИСВАНЕ  ВЪЗСТАНОВЕНАТА  СРЕДА , ДАННИ  OT ФИЗИКОХИМИЧЕН  МОНИТОРИНГ , ХРАНЕНЕ , РЕПРОДУКТИВНОСТ  HA DAPHNIA 
И СМЪРТНОСТ  ПРИ  ВЪЗРАСТНИТЕ  ИНДИВИДИ  
Експеримент  №: Начална  дата: Клонинг : Среда : Вид храна  Тестващо  вещество : Номинална  концентрация : 
Ден O 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21  
Възстановяване  на 
средата  (водна  
бълха ) 
РН ( 1 ) нова  
стара  
O 2 mg/l (  1 ) нова  
стара  
температура  
( o C) (  1 ) нова  
стара  
Предоставена  храна  
(водна  бълха ) 
Няма  живо  
поколение  ( 2 ) Общо  
Съд 1 
2 3 4 5
 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1267
 ▼B 
Експеримент  №: Начална  дата: Клонинг : Среда : Вид храна  Тестващо  вещество : Номинална  концентрация : 
Ден O 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21  
6 
7 8 9 10 
Общо  
Кумулативна  смъртност  
при възрастните  
индивиди  (
 3 ) 
( 1 ) Посочва  се кой съд е използван  за експеримента . 
( 2 ) Записва  се неразвитото  поколение  като „AB“ в съответната  клетка . 
( 3 ) Записва  се смъртността  на всяко  възрастно  животно  като „M“ в съответната  клетка .
 Приложение  4 
ПРИМЕРНА  ТАБЛИЦА  ЗА ЗАПИСВАНЕ  РЕЗУЛТАТИТЕ  OT ХИМИЧНИЯАНАЛИЗ  
а) Измерени  концентрации  
Номинална  
концентрация  Проба  от I седмица  Проба  от II седмица  Проба  от III седмица  
прясна  среда  стара  среда  прясна  среда  стара  среда  прясна  среда  стара  среда  
б) Измерени  концентрации  като  процент  от номинала  
Номинална  
концентрация  Проба  от I седмица  Проба  от II седмица  Проба  от III седмица  
прясна  среда  стара  среда  прясна  среда  стара  среда  прясна  среда  стара  среда ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1268
 
Приложение  5 
ИЗЧИСЛЯВАНЕ  HA НАТОВАРЕНА  СРЕДНА  СТОЙНОСТ  
Натоварена  средна  стойност  
Когато  е дадено , че концентрацията  тествано  вещество  може  да се намали  
за периода  между  възстановяването  на средата , е необходимо  да се прецени  
коя концентрация  от обхвата  на изпробваните  концентрации  върху  родител  
Daphnia  да се избере  като представителна . Изборът  се основава  на биолог­  
ически  и статистически  преценки . Например  ако репродуктивността  е 
повлияна  най-вече от изпробваната  върхова  концентрация , тогава  се 
използва  максималната  концентрация . Обаче  ако се смята , че акум­  
улираните  и по-дългосрочни  въздействия  на токсичното  вещество  са по- 
важни , то средната  концентрация  е по уместна . B този случай  подходящата  
средна  величина , която  се използва , е концентрацията  на натоварена  средна  
стойност , тъй като се взима  под внимание  променливостта  на моментната  
концентрация  през времето . 
Фигура  1 
Пример  за натоварена  средна  стойност
  
Фигура  1 показва  пример  за опростен  тест, който  продължава  седем  дни с 
възстановяване  на средата  в дни 0, 2 и 4. 
Тънката  зигзагообразна  линия  показва  концентрацията  по всяко  време . 
Предполага  се, че падането  на концентрацията  следва  експоненциалния  
процес  на разлагане . 
Шестте  изобразени  точки  представят  наблюдаваните  концентрации , 
които  са измерени  в началото  и в края  на всеки  период  на възста­  
новяване . 
Дебелата  линия  показва  позицията  на натоварената  средна  стойност . 
Натоварена  средна  стойност  се изчислява  така, че зоната  под натоварената  
средна  стойност  да е равна  на зоната  под кривата  на концентрация . Изчис­  
ляването  за по-горе посочения  пример  е посочено  в таблица  1. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1269
 
Таблица  1 
Изчисляване  на натоварената  средна  стойност  
№ на възстановяване  Дни Конц  0 Конц  1 Ln ( Конц  0) Ln ( Конц  1) Площ  
1 2 10,000 4,493 2,303 1,503 13,767 
2 2 11,000 6,037 2,398 1,798 16,544 3 3 10,000 4,066 2,303 1,403 19,781 
Общ  брой  дни: 7 Обща  площ  50,091 
Натоварена  
средна  
стойност  7,156
 
„Дни“ е броят  на дните  в периода  на възстановяване . 
„Конц 0“ е измерената  концентрация  в началото  на всеки  период  на възстановяване . 
„Конц 1“ e измерената  концентрация  в края  на всеки  период  на възстановяване . 
„Ln (Конц 0)“ е естествен  логаритъм  на Конц 0. 
„Ln (Конц 1)“ е естествен  логаритъм  на Конц 1. 
„Площ “ е площта  под експоненциалната  крива  за всеки  период  на възстановяване . 
Изчислява  се с уравнението : 
Площ ¼ Конц 0 Ä Конц 1 
LnðКонц 0Þ Ä LnðКонц 1Þ Ü Дни 
Натоварената  средна  стойност  и общата  зона са разделени  на общия  брой  
дни. 
Разбира  се, за теста  за репродуктивност  на Daphnia  таблицата  би трябвало  
да се разшири  до 21 дни. 
Ясно  е, че когато  се извършват  наблюдения  само  в началото  и в края  на 
периода  на възстановяване , е невъзможно  да се потвърди , че процесът  на 
спадане  е всъщност  експотенциален . Различна  крива  би довела  до различно  
изчисление  за графата  „Площ “. Обаче  експоненциалният  процес  на 
разлагане  не е неприемлив  и вероятно  е най-добрата  крива , която  при 
отсъствието  на друга  информация  следва  да се използва . 
Изисква  се обаче  внимателно  боравене , ако химическият  анализ  не доведе  
до намиране  на някакво  вещество  в края  на периода  на възстановяване . Ако 
не е възможно  да се оцени  колко  бързо  веществото  изчезва  от разтвора , е 
невъзможно  да се получи  реалистична  площ  под кривата  и следователно  е 
невъзможно  да се постигне  разумна  натоварена  средна  стойност . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1270
 
В.21. ПОЧВЕНИ  МИКРООРГАНИЗМИ : ИЗПИТВАНЕ  НА 
АЗОТНАТА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  
1. ME ТОД  
Този  метод  е идентичен  с ОECD TG 216 (2000).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Методът  за изпитване  представлява  предназначен  за лабораторни  
анализи  метод  за обследване  на дългосрочните  ефекти  върху  
азотната  трансформация  на почвените  микроорганизми  при 
еднократна  експозиция  с химикали . Изпитването  принципно  се 
основава  на Препоръките  на Европейската  и Средиземноморската  
организация  за защита  на растенията  (1). Други  насоки  обаче , 
включително  тези на Немския  биологичен  институт  (2), Америка­  
нската  агенция  за защита  на околната  среда  (3), SETAC (4) и 
Международната  организация  за стандартизация  (5), също  може  
да бъдат  взети  предвид . Семинарът  на ОИСР  за избор  на почви /­ 
седименти , проведен  в Belgirate, Италия , през 1995 г. (6), приема  
броя  и вида  на почвите , използвани  при това изпитване . 
Препоръките  за събиране , обработване  и съхранение  на почвената  
проба  се основават  на Ръководството  на ISO (7) и препоръките  от 
семинара  в Belgirate. За междинните  и окончателната  оценка  на 
токсичните  характеристики  на изпитваните  вещества  може  да 
бъде  изискано  определянето  на ефектите  върху  микробната  
активност  на почвата , напр . когато  се изискват  данни  за потенци­  
алната  големина  на ефектите  върху  почвената  микрофлора  от прод­  
уктите  за защита  на зърнените  култури  или когато  се очаква  
експозиция  на почвените  микроорганизми  от химикали , които  не 
са продукти  за защита  на зърнени  култури . Изпитването  за азотна  
трансформация  се провежда , за да се определят  ефектите  от такива  
химикали  върху  почвената  микрофлора . Ако се изпитват  агрох­  
имикали  (напр . продуктите  за защита  на зърнените  култури , 
торове , химикали  за защита  на горите ), се провеждат  едновременно  
азотна  и въглеродна  трансформация . Ако не се изпитват  агрохим­  
икали , достатъчно  е изпитването  за азотна  трансформация . Ако 
обаче  стойностите  на ЕС 50 на такива  химикали  при изпитването  
на азотната  трансформация  са в обхвата  на наличните  в естествено  
състояние  (натурални ) нитрификационни  инхибитори  (напр . 
нитрапирин ), трябва  да бъде  проведено  и изпитване  на 
въглеродната  трансформация , за да се събере  повече  информация . 
Почвите  се състоят  от живи  и неживи  компоненти , които  
съществуват  в комплексни  хетерогенни  смеси . Микроорга­  
низмите  играят  важна  роля  в разграждането  и трансформирането  
на органичната  материя  в наторените  почви , като различните  
видове  способстват  по различен  начин  за почвеното  плодородие . 
Всяко  дългосрочно  влияние  при тези биохимични  процеси  по 
всяка  вероятност  може  да окаже  влияние  на цикъла  на 
хранене , а това би могло  да измени  плодородието  на почвата . 
Във всички  наторени  почви  се извършват  трансформации  на 
азота  и въглерода . Въпреки  че микробните  общества  в разл­  
ичните  почви  отговарят  различно  на тези процеси , начините  
на трансформация  в основата  си са едни  и същи . 
Описаният  метод  за изпитване  е предназначен  за откриване  на 
дългосрочните  вредни  ефекти  от вещество , в хода  на азотната  
трансформация , при почви  с аеробна  повърхност . Методът  за 
изпитване  позволява  също  да се оценят  ефектите  от веществото  
при въглеродна  трансформация , извършвана  от почвената  
микрофлора . Образуването  на нитрат  се провежда  последов­  
ателно  при разграждане  на въглерод -азотните  връзки . Следов­  
ателно  ако в третираните  и контролните  проби  са установени  
равни  стойности  на образувания  нитрат , много  вероятно  е пост­  
игането  в най-висока  степен  на цялостното  и пълно  разграждане  
на въглерода . Избраният  за изпитването  субстрат  (люцерна  в 
прахообразна  форма ) е в предпочетено  въглерод -азотно  съот­  
ношение  (обикновено  между  12/1 и 16/1). Поради  това по 
време  на изпитването  се ограничава  въглеродното  „гладуване “ 
и ако микробните  общества  се изменят  вследствие  на прил­  
агането  на химикал , те могат  да се самовъзстановят  в рамките  
на 100-дневен  период  от време . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1271
 
Изпитванията , въз основа  на които  е разработен  този метод , са 
предназначени  предимно  за вещества , за които  може  да се 
предположи  количеството , до което  почвата  достига . Такъв  е 
случаят  например  с продуктите  за защита  на зърнените  
култури , за които  апликационното  ниво  е известно . За агрох­  
имикали  е достатъчно  изпитване  с две дози , съответстващо  на 
очакваното  или предполаганото  апликационно  ниво . Агрохим­  
икалите  могат  да бъдат  изпитвани  като активни  съставки  (a.i.) 
или като получени  продукти . Обаче  изпитването  не се 
ограничава  до агрохимикали . Чрез  промяна  едновременно  на 
количествата  на изпитваното  вещество , прилагано  върху  
почвата , и на начина , по който  се оценяват  данните , изпитването  
може  също  да бъде  приложено  при химикали , за които  е 
известно  количеството , което  се очаква  почвата  да достигне . 
По такъв  начин  се определят  ефектите  при азотна  транс­  
формация  от сериите  концентрации  на химикали , които  не са 
агрохимикали . Данните  от тези изследвания  се използват  за 
изготвянето  на кривата  доза-отговор  и за изчисляване  на стой­  
ностите  на ЕС х , където  х е определеният  в проценти  ефект . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Азотна  трансформация : е пълното  разграждане  от 
микроорганизми  на азот-съдържаща  органична  материя , през 
етапи  на амонификация  и нитрификация  до образуване  на 
съответния  неорганичен  краен  продукт  — нитрат . 
ЕС х (ефективна  концентрация ): е концентрацията  на 
изпитваното  вещество  в почвата , която  води  до х % задържане  
на трансформацията  на азота  до нитрат . 
ЕС 50 (средна  ефективна  концентрация ): е концентрацията  на 
изпитваното  вещество  в почвата , която  води  до 50 процента  
(50 %) задържане  на преобразуването  на азота  до нитрат . 
1.3. РЕФЕРЕНТНИ  ВЕЩЕСТВА  
Няма . 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Пресятата  почва  се подправя  с растителна  храна  в прахообразна  
форма  и всяка  проба  се третира  с изпитваното  вещество  или 
остава  необработена  с него  (контрола ). Ако се изпитва  агрох­  
имикал , се препоръчват  минимум  две концентрации  за 
изпитване  и те трябва  да бъдат  избрани  във връзка  с най- 
високата  очаквана  концентрация  в тази област . След  0, 7, 14 и 
28 дни от инкубирането  пробите  с третираните  и контролните  
почви  се екстрахират  с подходящ  разтворител  и се определят  
количествата  нитрат  в екстрактите . Нивото  на образувания  
нитрат  в третираните  проби  се сравнява  с нивото  в контролите  
и се изчислява  процентното  отклонение  в стойностите  на 
третираните  проби  и контролите . Всички  изпитвания  траят  
поне  28 дни. Ако на 28-ия ден разликите  между  третираните  и 
нетретираните  почви  са по-големи  или равни  на 25 %, 
измерванията  продължават , но не по-дълго  от 100 дни. Ако се 
изпитват  агрохимикали , в почвените  проби  се добавят  серия  от 
концентрации  на изпитваното  вещество  и след  28 инкубационни  
дни се измерват  количествата  на образувания  нитрат  в 
третираните  и контролните  проби . Резултатите  от изпитванията  
с множество  концентрации  се анализират  с използването  на 
регресионен  модел  и се изчисляват  стойностите  на ЕС х (т.е. 
ЕС 50 , EC  25 и/или ЕС 10 ). Вж. определенията . 
1.5. ВАЛИДИРАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Оценяването  на резултатите  от изпитването  с агрохимикали  се 
основава  на относително  малки  разлики  (т.е. средна  стойност  ± 
25 %) между  нитратните  концентрации  в контролните  и 
третираните  почвени  проби , така че големи  отклонения  в 
контролите  могат  да доведат  до погрешни  резултати . Следов­  
ателно  отклонението  между  еднаквите  контролни  образци  
трябва  да бъде  по-малко  от ± 15 %.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1272
 
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Апаратура  
Използват  се контейнери  за изпитване , направени  от химически  
инертен  материал . Те трябва  да бъдат  с подходящ  капацитет , в 
съответствие  с използваната  процедура  за инкубиране  на почви , 
т.е. инкубиране  в насипно  състояние  или в серии  от 
индивидуални  почвени  проби  (вж. точка  1.7.1.2). Трябва  да 
бъде  обърнато  внимание  едновременно  на минимизирането  на 
водните  загуби  и на невъзпрепятстването  на обмена  на газове  
по време  на изпитването  (напр . изпитваните  контейнери  могат  
да бъдат  покрити  с перфорирано  полиетиленово  фолио ). Когато  
се изпитват  летливи  вещества , трябва  да бъдат  използвани  запеч­  
атващи  се и газонепропускливи  контейнери . Те трябва  да бъдат  
с такъв  размер , че приблизително  една  четвърт  от техния  обем  
да е пълна  с почвената  проба . 
Използва  се стандартно  лабораторно  оборудване , както  следва : 
— разбъркващо /клатачно  устройство : механична  клатачка  или 
еквивалентно  оборудване ; 
— центруфуга  (3 000 g) или филтриращо  устройство  (използва  
се несъдържаща  нитрати  филтърна  хартия ); 
— инструмент  с подходяща  чувствителност  и способност  за 
възпроизводимост  на нитратния  анализ . 
1.6.2.  Избор  и брой  на почвените  проби  
Използва  се една -единствена  почвена  проба . Препоръчва  се 
почвата  да има характеристики , както  следва : 
— съдържание  на пясък : не по-малко  от 50 % и не повече  от 
75 %;  
— рН: 5,5—7,5;  
— съдържание  на органичен  въглерод : 0,5—1,5 %;  
— микробната  биомаса  трябва  да бъде  измерена  (8)(9) и 
нейното  въглеродно  съдържание  трябва  да бъде  най-малко  
1 % от общия  органичен  въглерод  в почвата . 
В повечето  случаи  почва  с такива  характеристики  представлява  
случай  на по-лоша  ситуация  и адсорбцията  на изпитвания  
химикал  е минимална , а наличността  му в микрофлората  е макс­  
имална . Следователно  като цяло  не е необходимо  провеждането  
на изпитвания  с други  почви . Въпреки  това при определени  
обстоятелства , напр . когато  се очаква  основно  употребата  на 
изпитваното  вещество  да е в определени  почви , такива  като 
кисели  горски  почви , или при електростатично  заредени  
химикали , може  да бъде  необходимо  да се използва  допълн­  
ителна  почвена  проба . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1273
 
1.6.3.  Събиране  и съхранение  на почвени  проби  
1.6.3.1.  Събиране  
Трябва  да има налична  подробна  историческа  информация  за 
мястото  в полето , откъдето  е взета  почва  за изпитване . Подроб­  
ностите  включват : точно  местоположение , растителна  покривка , 
дати  на третиране  с продукти  за защита  на зърнени  култури , 
обработване  с органични  и неорганични  торове , прибавяне  на 
биологични  материали  или аварийни  замърсявания . Избраното  
място  за вземане  на почва  трябва  да позволява  дългосрочна  
употреба . Постоянни  пасища , поля  с годишно  зърнени  култури  
(с изключение  на царевицата ) или гъсто  засети  зелени  торища  са 
подходящи  за вземане  на проби . Избраните  места  за вземане  на 
проби  не трябва  да са били  третирани  с продукти  за защита  на 
зърнените  култури  поне  една  година  преди  вземането  на 
пробите . Също  никакви  органични  торове  не трябва  да бъдат  
прилагани  поне  шест  месеца  преди  това. Употребата  на 
минерални  торове  е приемлива  само  когато , в съответствие  с 
изискванията  за зърнени  култури , почвени  проби  не трябва  да 
бъдат  вземани  поне  три месеца  след  използването  на такива  
торове . Използването  на почва , третирана  с торове  с известна  
биолигична  ефективност  (напр . калциев  цианамид ), трябва  да 
бъде  избягвано . 
Вземането  на проби  се избягва  през или веднага  след  дълги  (по- 
дълги  от 30 дни) периоди  на засушаване  или валежи . Проби  от 
разорани  почви  трябва  да бъдат  вземани  на дълбочина  от 0 до 
20 cm. При зелени  площи  (пасища ) или други  почви , които  не са 
били  разоравани  дълги  периоди  от време  (поне  един  растежен  
сезон ), максималната  дълбочина  за вземане  на проби  може  да 
бъде  малко  повече  от 20 cm ( напр . до 25 cm).  
Почвените  проби  трябва  да се транспортират  в контейнери  при 
определена  температура . Тези  условия  гарантират , че първонач­  
алните  свойства  на почвата  не са значително  изменени . 
1.6.3.2.  Съхранение  
Препоръчва  се използването  на прясно  събрани  почвени  проби . 
Ако съхраняване  в лабораторни  условия  не може  да бъде  
избегнато , почвите  могат  да бъдат  съхранявани  на тъмно  при 
4 ± 2  o С в продължение  максимум  на три месеца . По време  на 
съхраняването  на почвите  трябва  да бъдат  осигурени  аеробни  
условия . Ако почвите  са събрани  от области , където  са 
замръзнали  през поне  три месеца  в годината , те могат  да 
бъдат  съхранени  за шест  месеца  при температура  от минус  18  
o С до минус  22 o С. Микробната  биомаса  на съхраняваната  почва  
се измерва  преди  всеки  експеримент  и съдържанието  на 
въглерод  в биомасата  трябва  да бъде  поне  1 % от общото  
съдържание  на органичен  въглерод  в почвата  (вж. точка  1.6.2).  
1.6.4.  Обработване  и подготовка  на почвата  преди  изпитването  
1.6.4.1.  Предварителна  инкубация  
Ако почвата  ще бъде  съхранявана  (вж. точки  1.6.3.2), се 
препоръчва  предварителна  инкубация  през периода  от 2-рия до 
28-ия ден. Температурата  и съдържанието  на влага  в почвата  
при предварителната  инкубация  трябва  да бъдат  подобни  на 
използваните  при изпитването  (вж. точки  1.6.4.2 и 1.7.1.3).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1274
 
1.6.4.2.  Физикохимични  характеристики  
Почвата  ръчно  се почиства  от големи  предмети  (напр . камъни , 
части  от растения  и др.) и тогава  влагата  се филтрира , без 
допълнително  сушене , при размер  на частиците , по-малък  или 
равен  на 2 mm. Съдържанието  на влага  в почвената  проба  
трябва  да бъде  регулирано  с дестилирана  или дейонизирана  
вода  до стойност  между  40 % и 60 % от максималната  
способност  за задържане  на вода . 
1.6.4.3.  Изменение  с органичен  субстрат  
Почвата  трябва  да бъде  изменена  (подобрена /захранена ) с 
подходящ  органичен  субстрат , напр . люцерна -зелена  трева  
(основен  компонент : Medicago sativa)  със съотношение  C/N 
между  12/1 и 16/1. Препоръчваното  съотношение  люцерна : 
почва  е 5 g люцерна  за 1 kg почва  (сухо  тегло ). 
1.6.5.  Подготовка  на изпитваното  вещество  за прилагане  в 
почвата  
Изпитваното  вещество  обикновено  се прилага  чрез използване  
на носител . Носителят  може  да бъде  вода  (за водоразтворими  
вещества ) или инертно  твърдо  вещество , като ситен  кварцов  
пясък  (размер  на частиците : 0,1—0,5 mm). Употребата  на 
течни  носители , различни  от вода  (напр . органични  разт­  
ворители , такива  като ацетон , хлороформ ), трябва  да бъде  
избягвана , тъй като те могат  да увредят  микрофлората . Ако 
като носител  се използва  пясък , той може  да бъде  покрит  с 
разтвореното  или суспендирано  в подходящ  разтворител  
изпитвано  вещество . В такива  случаи  разтворителят  трябва  
чрез изпаряване  да бъде  отстранен  преди  смесването  с почва . 
За оптимално  разпространение  на изпитваното  вещество  в 
почвата  се препоръчва  да се използва  съотношение  10 g пясък  
на килограм  почва  (сухо  тегло ). Контролните  проби  се третират  
само  с еквивалентни  количества  вода  и/или кварцов  пясък . 
Когато  се изпитват  летливи  химикали , трябва , доколкото  е 
възможно , да бъдат  избегнати  загубите  и експериментът  трябва  
да бъде  проведен  при осигурено  хомогенно  разпределение  в 
почвата  (напр . изпитваното  вещество  трябва  да бъде  впръскано /­ 
вкарано  в почвата  на няколко  места ). 
1.6.6.  Изпитвани  концентрации  
Ако се изпитват  агрохимикали , трябва  да се използват  поне  две 
концентрации . По-ниската  концентрация  може  да се отрази  най- 
малко  на максималното  количество , което  се очаква  да достигне  
почвата  при условията  на експеримента , като се има предвид , че 
по-високата  концентрация  трябва  да бъде  кратна  на по-ниската  
концентрация . Концентрациите  на изпитваното  вещество , 
добавяно  към почвата , се изчисляват , като се приема , че има 
еднакво  смесване  в дълбочина  от 5 cm и плътност  на 
насипната  почва  1,5. За агрохимикали , които  се прилагат  
директно  в почвата , или за химикали , за които  може  да бъде  
предвидено  достигнатото  количество  в почвата , се препоръчва  
като изпитвани  концентрации  да се използват  максимално  
предвижданите  концентрации  в околната  среда  (РЕС) и пет 
времена  за концентрация . Веществата , които  се очаква  да 
бъдат  прилагани  в почвата  неколкократно  за един  сезон , 
трябва  да бъдат  изпитвани  при концентрации , получени  от 
умножението  на РЕС и очаквания  максимален  брой  апликации . 
По-високата  концентрация  обаче  не трябва  да превишава  с 
повече  от десет  пъти  стойността  на максималното  еднократно  
прилагано  ниво . Ако не се изпитват  агрохимикали , се прилага  
геометрична  серия  от поне  пет концентрации . Изпитваните  
концентрации  трябва  да покриват  обхвата , нужен  за определяне  
стойностите  на ЕС х . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1275
 
1.7. ПРЕДСТАВЯНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
1.7.1.  Условия  на експозиция  
1.7.1.1.  Третиране  и контрол  
Ако се изпитват  агрохимикали , почвата  се разделя  на три части  
с еднаква  маса . Двете  части  се смесват  с носителя , съдържащ  
продукта , а другата  част се смесва  с носителя , който  не съдържа  
продукта  (контрола ). Препоръчва  се използването  на минимум  
три реплики  на двете  третирани  и нетретираната  почвена  проба . 
Ако не се изпитват  агрохимикали , почвата  се разделя  на шест  
части  с еднаква  маса . Пет от пробите  се смесват  с носителя , 
съдържащ  изпитваното  вещество , а шестата  проба  се изпитва  с 
носителя , несъдържащ  химикала . Препоръчва  се използването  на 
минимум  три реплики  на двете  третирани  проби  и контролата . 
Трябва  да се обърне  внимание  на осигуряването  на хомогенно  
разпределение  на изпитваното  вещество  в третираните  почвени  
проби . По време  на смесването  трябва  да бъде  избягвано  
сбиването  или кълбообразното  натрупване  на почвата . 
1.7.1.2.  Инкубация  на почвени  проби  
Инкубация  на почвените  проби  може  да бъде  извършена  по два 
начина : като насипни  проби  от всяка  третирана  и нетретирана  
почва  или като серия  от индивидуални  и с еднаква  маса  
подпроби  от всяка  третирана  и нетретирана  почва . Когато  
обаче  се изпитват  летливи  вещества , се извършва  изпитване  
само  със серия  от индивидуални  подпроби . Когато  се 
инкубират  почви  в насипно  количество , се приготвят  големи  
количества  от всички  третирани  и нетретирани  почви  и за 
подпробите , които  ще се анализират , се взема  такова  колич­  
ество , каквото  е необходимо  за провеждане  на изпитването . 
Първоначално  приготвеното  количество  за всяко  третиране  и 
контрола  зависи  от големината  на подпробите , броя  на 
използваните  при анализа  реплики  и максималния  очакван  
брой  на времената  за изпитване . Почвите , които  се инкубират  
в насипно  количество , трябва  да бъдат  напълно  смесени  
(хомогенизирани ) преди  отделянето  на подпробите . Когато  
почвите  се инкубират  като серия  от индивидуални  почвени  
проби , всяка  третирана  или нетретирана  почвена  проба  в 
насипно  количество  се разделя  на необходимия  брой  подпроби  
и те се използват , както  е необходимо . При експериментите , при 
които  се очакват  повече  от две времена  на изпитване , трябва  да 
бъдат  приготвени  достатъчно  подпроби , за да бъдат  отчетени  
всички  реплики  и всички  времена  на изпитване . Поне  три 
повтарящи  се проби  (реплики ) трябва  да бъдат  инкубирани  
при аеробни  условия  (вж. точка  1.7.1.1). По време  на всички  
изпитвания  трябва  да бъдат  използвани  подходящи  контейнери  
с достатъчно  пространство  в горния  си край , за да се избегне  
възникването  на анаеробни  условия . Когато  се изпитват  летливи  
вещества , изпитването  трябва  да бъде  проведено  само  при серия  
индивидуални  подпроби . 
1.7.1.3.  Условия  и продължителност  на изпитването  
Изпитването  се провежда  на тъмно  при стайна  температура  20 ± 
2 o С. Съдържанието  на влага  в почвените  образци  трябва  да 
бъде  поддържано  по време  на изпитването  между  40 % и 
60 % от максималната  способност  на почвата  да задържа  вода  
(вж. точка  1.6.4.2) в обхвата  ± 5 %. Добавя  се дестилирана , 
дейонизирана  вода , ако е необходимо . 
Минималната  продължителност  на изпитванията  е 28 дни. Ако 
се изпитват  агрохимикали , стойностите  на образувания  нитрат  в 
третираните  и контролните  проби  се сравняват . Ако те се разл­  
ичават  с повече  от 25 % на 28-ия ден, изпитването  продължава , 
докато  се получи  разлика , равна  или по-малка  от 25 %, или за 
максимум  100 дни, която  е по-малка . Ако не се изпитват  агрох­  
имикали , изпитването  завършва  след  28 дни. На 28-ия ден се 
определят  количествата  на нитрата  в третираните  и контролните  
почвени  проби  и се изчисляват  стойностите  на ЕС х . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1276
 
1.7.2.  Вземане  на проби  и анализ  на почви  
1.7.2.1.  Схема  за вземане  на почвени  проби  
Ако се изпитват  агрохимикали , почвените  проби  се анализират  
за нитрат  в ден 0 и през 7-ия, 14-ия и 28-ия ден. Ако е необ­  
ходимо  удължаване  на изпитването , трябва  да бъдат  направени  
допълнителни  измервания  през 14-дневни  интервали  след  28-ия 
ден. 
Ако не се изпитват  агрохимикали , се използват  поне  пет 
изпитвани  концентрации  и почвените  проби  се анализират  за 
нитрати  в началото  (ден 0) и в края  на периода  на експозиция  
(28 дни). Може  да бъде  направено  внезапно  измерване , напр . 
през 7-ия ден, ако изглежда  необходимо . Данните , получени  
на 28-ия ден, се използват  за определяне  стойността  на ЕС х за 
химикала . При желание  данните  от ден 0 на контролните  проби  
също  могат  да бъдат  използвани  за оценяване  на първонач­  
алното  количество  на нитрата  в почвата . 
1.7.2.2.  Анализ  на почвените  проби  
Количеството  на образувания  нитрат  се определя  за всяка  
третирана  и контролна  реплика  за времето  на всяка  проба . 
Нитратът  се екстрахира  от почвата  чрез разклащане  на 
пробите  и подходящия  екстрахиращ  разтворител , напр . 0,1 Μ 
разтвор  на калиев  хлорид . Препоръчва  се количество  от 5 ml 
разтвор  на КСl на грам  сухо  тегло  почвен  еквивалент . За 
оптимално  екстрахиране  контейнерите , в които  се намират  
почвата  и екстрахиращият  разтвор , трябва  да не бъдат  по- 
пълни  от половината  им обем . Смесите  се разклащат  при 150 
rpm в продължение  на 60 минути . После  смесите  се центроф­  
угират  или филтрират  и течните  фази  се анализират  за нитрат . 
Течните  екстракти , освободени  от твърди  частици , могат  да 
бъдат  съхранявани  преди  анализ  при минус  20 ± 5  o С за 
период  до шест  месеца . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Ако се изпитват  агрохимикали , образуваният  нитрат  трябва  да 
бъде  записан  за всяка  повтаряща  се почвена  проба  (реплика ), а 
средните  стойности  от всички  реплики  трябва  да бъдат  
представени  в таблична  форма . Стойностите  на азотната  транс­  
формация  трябва  да бъдат  оценявани  чрез подходящи  и 
общоприети  статистически  методи  (напр . F-метод , 5 % ниво  на 
значимост ). Количествата  на образувания  нитрат  се изразяват  в 
mg нитрат /kg сухо  тегло  почва /ден. Стойността  на получения  
нитрат  при всяко  третиране  се сравнява  с това на контролата  
и се изчислява  процентното  отклонение  от контролата . 
Ако изпитванията  не са проведени  с агрохимикали , количеството  
на образувания  нитрат  се определя  за всяка  реплика  и се изготвя  
крива  доза-отговор  за оценка  на стойностите  на ЕС х . Количествата  
на нитрата  (т.е. mg нитрат /kg сухо  тегло  почва ), открити  в 
третираните  проби  след  28 дни, се сравняват  с тези в контролите . 
От тези данни  се изчисляват  процентните  стойности  на задържане  
за всяка  изпитана  концентрация . Тези  проценти  се разпределят  
спрямо  концентрацията  и се използват  статистически  процедури  
за изчисляване  на стойностите  на ЕС х . Доверителните  интервали  
(р = 0,95) за изчислените  ЕС х също  се определят  чрез използване  
на стандартни  процедури  (10) (11) (12).  
Изпитвани  вещества , които  съдържат  големи  количества  азот, 
могат  да подпомогнат  получаването  на количествата  нитрат  по 
време  на изпитването . Ако тези вещества  се изпитват  при висока  
концентрация  (напр . химикали , които  се очаква  да бъдат  
използвани  при повтарящи  се апликации ), в изпитването  
трябва  да бъдат  включени  и подходящи  контроли  (т.е. почва  
плюс  изпитвано  вещество , но без растителна  храна ). Данните  
от тези контроли  трябва  да бъдат  използвани  при изчисленията  
на ЕС х . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1277
 
2.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
При оценяване  на резултатите  от изпитванията  с агрохимикали , 
когато  разликата  в стойностите  на образувания  нитрат  при по- 
слабото  третиране  (т.е. максималната  предвиждана  конце­  
нтрация ) и контрола  е по-малка  или равна  на 25 % по всяко  
време  на проби  след  28-ия ден, продуктът  може  да бъде  
оценен  като такъв , който  няма  дълготрайно  влияние  върху  
азотната  трансформация  в почвите . Когато  се оценяват  
резултати  от изпитвания  с химикали , различни  от агрохимик­  
алите , се използват  стойностите  на ЕС 50 , EC  25 и/или ЕС 10 . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Протоколът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  
информация : 
Пълно  идентифициране  на използваната  почва , което  включва : 
— географско  положение  на мястото  (географска  ширина , 
географска  дължина ); 
— историческа  информация  за мястото  (т.е. покриваща  раст­  
ителност , третиране  с продукти  за защита  на зърнените  
култури , третиране  с торове , аварийно  замърсяване  и др.); 
— използвани  образци  (напр . земеделска  почва , гора и др.); 
— дълбочина  на вземане  на пробата  (cm);  
— съдържание  на пясък /тиня /глина  ( % сухо  тегло ); 
— рН (във вода ); 
— съдържание  на органичен  въглерод  ( % сухо  тегло ); 
— съдържание  на азот ( % сухо  тегло ); 
— начална  нитратна  концентрация  (mg нитрат /kg сухо  тегло ); 
— способност  за катионен  обмен  (mmol/kg);  
— —микробиална  биомаса  в процентно  съотношение  с общия  
органичен  въглерод ; 
— референции  на използваните  методи  за определянето  на 
всеки  параметър ; 
— цялата  информация , свързана  със събирането  и съхранението  
на почвени  проби ; 
— подробности  за предварителната  инкубация  на почвата , ако 
има. 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  и, където  е подходящо , физикохимични  
свойства ; 
— данни  за идентичността  на химикала , където  е подходящо , 
включително  структурна  формула , чистота  (т.е. за продукти  
за защита  на зърнени  култури  – процентът  на активната  
съставка ), съдържание  на азот. 
Субстрат : 
— източник  на субстрата ; 
— състав  (т.е. люцерна , люцерна -зелена  трева ); 
— съдържание  на азот и въглерод  ( % сухо  тегло ); 
— размер  на ситото  (mm).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1278
 
Условия  на изпитването : 
— подробности  за изменението  на почвата  с органичен  
субстрат ; 
— брой  на използваните  концентрации  на изпитваното  
вещество  и, където  е подходящо , обосноваване  на 
избраните  концентрации ; 
— подробности  около  апликирането  на изпитваното  вещество  в 
почвата ; 
— инкубационна  температура ; 
— съдържание  на влага  в почвата  при започване  и по време  на 
изпитването ; 
— метод  на инкубация  на използваната  почва  (т.е. в насипно  
количество  или като серия  от индивидуални  почвени  
подпроби ); 
— брой  на репликите  (повтарящи  се почвени  проби ); 
— времена  при вземане  на пробите ; 
— използван  метод  за екстрахиране  на нитрата  от почвата . 
Резултати : 
— аналитична  процедура  и оборудване , използвани  при анализа  
на нитрата ; 
— таблични  данни , включващи  индивидуални  и средни  
стойности  от измерванията  на нитрата ; 
— отклонения  между  репликите  в третираните  и контролните  
проби ; 
— обяснения  на направените  корекции  в изчисленията , ако е 
подходящо ; 
— процентни  отклонения  в стойностите  на образувания  нитрат  
за времето  на всяка  проби  или, ако е подходящо , ЕС 50 с 
95 % потвърдено  ограничение , други  ЕС х (т.е. ЕС 25 или 
ЕС 10 ) с доверителни  интервали , и графика  на кривата  доза- 
отговор ; 
— статистическо  обработване  на резултатите ; 
— пялата  информация  и наблюдения , подпомагащи  
интерпретирането  на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) EPPO (1994). Decision-Making Scheme for the Environmental 
Risk Assessment of Plant Protection Chemicals. Chapter 7: Soil Microflora. EPPO Bulletin 24: 1—16, 1994.
 
(2) BBA (1990). Effects on the Activity of the Soil Microflora. 
BBA Guidelines for the Official Testing of Plant Protection Products, VI, 1—1 (2nd eds., 1990).
 
(3) EPA (1987). Soil Microbial Community Toxicity Test. EPA 40 
CFR Part 797.3700. Toxic Substances Control Act Test Guide ­
lines; Proposed rule. September 28, 1987.  
(4) SETAC-Europe (1995). Procedures for assessing the environ ­
mental fate and ecotoxicity of pesticides, Ed. M. R. Lynch, 
Pub. SETAC-Europe, Bruxelles.  
(5) ISO/DIS 14238 (1995). Soil Quality — Determination of 
Nitrogen Mineralisation and Nitrification in Soils and the Influence of Chemicals on these Processes. Technical 
Committee ISO/TC 190/SC 4:  Soil Quality — Biological 
Methods.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1279
 
(6) OECD (1995). Final Report of the OECD Workshop on 
Selection of Soils/Sediments, Belgirate, Italie, 18-20 janvier 
1995.  
(7) ISO 10381-6 (1993). Soil quality — Sampling. Guidance on 
the collection, handling and storage of soil for the assessment of aerobic microbial processes in the laboratory.
 
(8) ISO 14240-1 (1997). Soil quality — Determination of soil 
microbial biomass — Part 1: Substrateinduced respiration 
method.  
(9) ISO 14240-2 (1997). Soil quality — Determination of soil 
microbial biomass — Part 2: Fumigationextraction method.  
(10) Litchfield, J. T. and Wilcoxon F. (1949). A simplified method 
of evaluating dose-effect experiments. Jour. Pharmacol. and 
Exper. Ther., 96, 99-113.  
(11) Finney, D. J. (1971). Probit Analysis. 3rd ed., Cambridge, 
London and New-York.  
(12) Finney, D. J. (1978). Statistical Methods in biological 
Assay.Griffin, Weycombe, UK.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1280
 
В.22. ПОЧВЕНИ  МИКРООРГАНИЗМИ : ИЗПИТВАНЕ  НА ВЪГЛ­  
ЕРОДНАТА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е идентичен  с ОECD TG 217 (2000).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Методът  за изпитване  представлява  предназначен  за 
лабораторни  анализи  метод  за обследване  на дългосрочните  
потенциални  ефекти  от еднократна  експозиция  на продуктите  
за защита  на зърнените  култури  и други  възможни  химикали  
при преобразуването  на въглерода  от почвените  микроорга­  
низми . Изпитването  принципно  се основава  на Препоръките  на 
Европейската  и Средиземноморската  организация  за защита  на 
растенията  (1). Други  насоки  обаче , включително  тези на 
Немският  национален  биологичен  институт  (2), Американската  
агенция  за защита  на околната  среда  (3) и SETAC (4), също  
може  да бъдат  взети  предвид . Семинарът  на ОИСР  за избор  на 
почви /седименти , проведен  в Belgirate, Италия , през 1995 г. (5), 
приема  броя  и вида  на почвите , използвани  при това изпитване . 
Препоръките  за събиране , обработване  и съхранение  на почвената  
проба  се основават  на Ръководството  на ISO (6) и препоръките  от 
семинара  в Belgirate.  
За междинните  и окончателната  оценка  на токсичните  
характеристики  на изпитваните  вещества  може  да бъде  
изискано  определянето  на ефектите  върху  микробната  
активност  на почвата , напр . когато  се изискват  данни  за поте­  
нциалната  големина  на ефектите  върху  почвената  микрофлора  
от продуктите  за защита  на зърнените  култури  или когато  се 
очаква  експозиция  на почвените  микроорганизми  от химикали , 
които  не са продукти  за защита  на зърнени  култури . 
Изпитването  за въглеродна  трансформация  се провежда , за да 
се определят  ефектите  от такива  химикали  върху  почвената  
микрофлора . Ако се изпитват  агрохимикали  (напр . продукти  за 
защита  на зърнените  култури , торове , химикали  за защита  на 
горите ), се провеждат  едновременно  азотна  и въглеродна  транс­  
формация . Ако не се изпитват  агрохимикали , достатъчно  е 
изпитването  за азотна  трансформация . Ако обаче  стойностите  
на ЕС 50 на такива  химикали  при изпитването  на азотната  транс­  
формация  са в обхвата  на наличните  в естествено  състояние  
(натуралните ) нитрификационни  инхибитори  (напр . 
нитрапирин ), трябва  да бъде  проведено  и изпитване  на 
въглеродната  трансформация , за да се събере  повече  
информация . 
Почвите  се състоят  от живи  и неживи  компоненти , които  
съществуват  в комплексни  хетерогенни  смеси . Микроорга­  
низмите  играят  важна  роля  в разграждането  и трансформирането  
на органичната  материя  в наторените  почви , като различните  
видове  способстват  по различен  начин  за почвеното  плодородие . 
Всяко  дългосрочно  влияние  при тези биохимични  процеси  по 
всяка  вероятност  може  да окаже  влияние  на цикъла  на 
хранене , а това би могло  да измени  плодородието  на почвата . 
Във всички  плодородни  почви  се извършват  трансформации  на 
азота  и въглерода . Въпреки  че микробните  съобщества  в разл­  
ичните  почви  отговарят  различно  на тези процеси , начините  на 
трансформация  в основата  си са едни  и същи . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1281
 
Този  метод  за изпитване  е предназначен  за откриване  на 
дългосрочните  вредни  ефекти  от вещество  в хода  на въглеродна  
трансформация  при почви  с аеробна  повърхност . Методът  е 
чувствителен  към промени  в размера  и активността  на 
микробните  съобщества , отговорни  за въглеродната  транс­  
формация , тъй като тези съобщества  са зависими  едновременно  
от въздействието  на химикала  и от въглеродно  „гладуване “. 
Използва  се пясъчна  почва  с ниско  съдържание  на органична  
материя . Тази  почва  се третира  с изпитваното  вещество  и се 
инкубира  при условия , позволяващи  бърз  микробен  метабо­  
лизъм . При тези условия  източниците  на леснодостъпен  
въглерод  в почвата  бързо  се изчерпват . Това  причинява  
въглеродното  „гладуване “, което  едновременно  убива  
микробните  клетки  и предизвиква  латентност  (летаргия ) и/или 
спорообразуване . Ако изпитването  продължи  повече  от 28 дни, 
сумата  от тези реакции  може  да бъде  измерена  в (нетретирана  
почва ) контроли  като прогресивна  загуба  на метаболично  
активната  микробна  биомаса  (7). Ако биомасата  във въглеродно  
трансформираните  почви , при условията  на провеждане  на 
експеримента , се влияе  от присъствието  на химикал , тя не 
може  да бъде  върната  за използване  на същото  ниво  като 
контрола . Следователно  смущенията , причинени  от изпитваното  
вещество  във всеки  един  момент  от време  през периода  на 
провеждане  на експеримента , често  продължават  до края  на 
изпитването . 
Изпитванията , въз основа  на които  е разработен  този метод , са 
били  предназначени  предимно  за вещества , за които  може  да се 
предположи  количеството , до което  почвата  достига .Такъв  е 
случаят , например , с продуктите  за защита  на зърнените  
култури , за които  е известно  апликационното  ниво . За агрох­  
имикали  е достатъчно  изпитване  с две дози , съответстващо  на 
очакваното  или предполаганото  апликационно  ниво . Агрохим­  
икалите  могат  да бъдат  изпитвани  като активни  съставки  (a.i.) 
или като получени  (крайни ) продукти . Обаче  изпитването  не се 
ограничава  до химикали  с предвидими  концентрации  в околната  
среда . Чрез  промяна  едновременно  на количествата  на 
изпитваното  вещество , прилагано  върху  почвата , и на начина , 
по който  се оценяват  данните , изпитването  може  също  да бъде  
приложено  при химикали , за които  не е известно  количеството , 
което  се очаква  почвата  да достигне . По такъв  начин  се 
определят  ефектите  от въглеродна  трансформация  при серия  
концентрации  на химикали , които  не са агрохимикали . 
Данните  от тези изследвания  се използват  за изготвянето  на 
кривата  доза-отговор  и за изчисляване  на стойностите  на ЕС х , 
където  х е определения  в проценти  ефект . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Въглеродна  трансформация : е микроорганичното  разграждане  
на органична  материя  до образуване  на неорганичния  краен  
продукт  въглероден  диоксид . 
ЕС х (ефективна  концентрация ): е концентрацията  на 
изпитваното  вещество  в почвата , която  води  до х % задържане  
на преобразуването  на въглерода  във въглероден  диоксид . 
ЕС 50 (средна  ефективна  концентрация ): е концентрацията  на 
изпитваното  вещество  в почвата , която  води  до 50 % задържане  
на преобразуването  на въглерода  във въглероден  диоксид . 
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
Няма . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1282
 
1.4. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Пресятата  почва  или се третира  с изпитваното  вещество , или 
остава  нетретирана  (контрола ). Ако се изпитват  агрохимикали , 
се препоръчват  минимум  две концентрации  за изпитване  и те 
трябва  да бъдат  избрани  във връзка  с най-високата  очаквана  
концентрация  в тази област . След  0, 7, 14 и 28 дни от 
инкубирането  пробите  с третираните  и контролните  почви  се 
смесват  с глюкоза  и се измерват  нивата  на глюкозно  
предизвиканата  респирация  за 12-часов  непрекъснат  интервал  
от време . Респираторните  нива  се изразяват  като отделен  
въглероден  диоксид  (mg въглероден  диоксид /kg суха  почва /h) 
или погълнат  кислород  (mg кислород /kg почва /h). Средното  
респираторно  ниво  в третираните  почвени  проби  се сравнява  с 
това в контролите  и се изчислява  процентното  отклонение  в 
нивото  на третираните  проби  и контролите . Всички  изпитвания  
траят  поне  28 дни. Ако на 28-ия ден разликите  между  
третираните  и нетретираните  почви  са по-големи  или равни  на 
25 %, измерванията  продължават  на 14-дневни  интервали  в 
продължение  на максимум  100 дни. Ако се изпитват  
химикали , които  не са агрохимикали , в почвените  проби  се 
добавят  серия  от концентрации  на изпитваното  вещество  и 
след  28 инкубационни  дни се измерват  нивата  на глюкозно  
предизвиканата  респирация  (т.е. средно  количествата  на 
образувания  въглероден  диоксид  или погълнатия  кислород ). 
Резултатите  от изпитванията  със сериите  от концентрации  се 
анализират  чрез използване  на регресионен  модел  и се 
изчисляват  стойностите  на ЕС х (т.е. ЕС 50 , ЕС 25 и/или ЕС 10 ). 
Вж. определенията . 
1.5 . ВАЛИДИРАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Оценяването  на резултатите  от изпитването  с агрохимикали  се 
основава  на относително  малки  разлики  (т.е. средна  стойност  ± 
25 %) между  отделяния  въглероден  диоксид  или погълнатия  
кислород  във (или чрез) контролните  и третираните  почвени  
проби , така че големи  отклонения  в контролите  могат  да 
доведат  до погрешни  резултати . Следователно  отклонението  
между  еднаквите  контролни  образци  трябва  да бъде  по-малко  
от ± 15 %.  
1.6. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.6.1.  Апаратура  
Използват  се контейнери  за изпитване , направени  от химически  
инертен  материал . Те трябва  да бъдат  с подходящ  капацитет , в 
съответствие  с използваната  процедура  за инкубиране  на почви , 
т.е. инкубиране  в насипно  състояние  или в серии  от 
индивидуални  почвени  проби  (вж. точка  1.7.1.2). Трябва  да 
бъде  обърнато  внимание  едновременно  на минимизирането  на 
водните  загуби  и на невъзпрепятствания  обмен  на газове  по 
време  на изпитването  (напр . изпитваните  контейнери  могат  да 
бъдат  покрити  с перфорирано  полиетиленово  фолио ). Когато  се 
изпитват  летливи  вещества , трябва  да бъдат  използвани  запеч­  
атващи  се и газонепропускливи  контейнери . Те трябва  да бъдат  
с такъв  размер , че приблизително  една  четвърт  от техния  обем  
да е пълна  с почвената  проба . 
За определяне  на глюкозно  предизвиканата  респирация  са необ­  
ходими  инкубационна  система  и инструменти  за измерване  
производството  на въглероден  диоксид  или консумацията  на 
кислород . Примери  за такива  системи  и инструменти  могат  да 
бъдат  намерени  в препратки  (8) (9) (10) (11).  
1.6.2.  Избор  и брой  на почвените  проби  
Използва  се една -единствена  почвена  проба . Препоръчва  се 
почвата  да има характеристики , както  следва : 
— съдържание  на пясък : не по-малко  от 50 % и не повече  
от 75 %;  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1283
 
— pH: 5,5—7,5;  
— съдържание  на органичен  въглерод : 0,5—1,5 %;  
— микробната  биомаса  трябва  да бъде  измерена  (12) (13) и 
нейното  въглеродно  съдържание  трябва  да бъде  поне  1 % 
от общия  органичен  въглерод  в почвата . 
В повечето  случаи  почва  с такива  характеристики  представлява  
по-лоша  ситуация  и адсорбцията  на изпитвания  химикал  е 
минимална , а наличността  му в микрофлората  е максимално . 
Следователно  като цяло  не е необходимо  провеждането  на 
изпитвания  с други  почви . Въпреки  това при определени  обсто­  
ятелства , напр . когато  се очаква  основно  употребата  на 
изпитваното  вещество  да е в определени  почви , такива  като 
кисели  горски  почви  или при електростатично  заредени  
химикали , може  да бъде  необходимо  да се замени  с допълн­  
ителна  почвена  проба . 
1.6.3.  Събиране  и съхранение  на почвени  проби  
1.6.3.1.  Събиране  
Трябва  да има налична  подробна  историческа  информация  за 
мястото  в полето , откъдето  е взета  почва  за изпитване . Подроб­  
ностите  включват : точно  местоположение , растителна  покривка , 
дати  на третиране  с продукти  за защита  на зърнени  култури , 
обработване  с органични  и неорганични  торове , прибавяне  на 
биологични  материали  или аварийни  замурсявания . Избраното  
място  за вземане  на почва  трябва  да позволява  дългосрочна  
употреба . Постоянни  пасища , поля  с годишни  зърнени  култури  
(с изключение  на царевицата ) или гъсто  засети  зелени  торища  са 
подходящи  за вземане  на проби . Избраните  места  за вземане  на 
проби  не трябва  да са били  третирани  с продукти  за защита  на 
зърнените  култури  поне  една  година  преди  вземането  на 
пробите . Също  така никакви  органични  торове  не трябва  да 
бъдат  прилагани  поне  шест  месеца  преди  това. Употребата  на 
минерални  торове  е приемлива  само  когато , в съответствие  с 
изискванията  за зърнени  култури , почвени  проби  не трябва  да 
бъдат  вземани  поне  три месеца  след  използването  на такива  
торове . Използването  на почва , третирана  с торове  с известна  
биологична  ефективност  (напр . калциев  цианамид ), трябва  да 
бъде  избягвано . 
Вземането  на проби  се избягва  през или веднага  след  дълги  (по- 
дълги  от 30 дни) периоди  на засушаване  или валежи . Проби  от 
разорани  почви  трябва  да бъдат  вземани  на дълбочина  от 0 до 
20 cm. При зелени  площи  (пасища ) или други  почви , които  не са 
били  разоравани  дълги  периоди  от време  (поне  един  растежен  
сезон ), максималната  дълбочина  за вземане  на проби  може  да 
бъде  малко  повече  от 20 cm (напр . до 25 cm). Почвените  проби  
трябва  да се транспортират  в контейнери  при определена  
температура . Тези  условия  гарантират , че първоначалните  
свойства  на почвата  не са значително  изменени . 
1.6.3.2.  Съхранение  
Препоръчва  се използването  на прясно  събрани  почвени  проби . 
Ако съхраняване  в лабораторни  условия  не може  да бъде  
избегнато , почвите  могат  да бъдат  съхранявани  на тъмно  при 
4 ± 2  o С в продължение  максимум  на три месеца . По време  на 
съхраняването  на почвите , трябва  да бъдат  осигурени  аеробни  
условия . Ако почвите  са събрани  от области , където  са 
замръзнали  през поне  три месеца  в годината , те могат  да 
бъдат  съхранени  за шест  месеца  при минус  18  o С. Микробната  
биомаса  на съхраняваната  почва  се измерва , преди  всеки  
експеримент  и съдържанието  на въглерод  в биомасата  трябва  
да бъде  поне  1 % от общото  съдържание  на органичен  
въглерод  в почвата  (вж. точка  1.6.2).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1284
 
1.6.4.  Обработване  и подготовка  на почвата  преди  изпитването  
1.6.4.1.  Предварителна  инкубация  
Ако почвата  ще бъде  съхранявана  (вж. точки  1.6.4.2 и 1.7.1.3), 
се препоръчва  предварителна  инкубация  през периода  от 2-рия 
до 28-ия ден. Температурата  и съдържанието  на влага  в почвата  
при предварителната  инкубация  трябва  да бъдат  подобни  на 
използваните  при изпитването  (вж. точки  1.6.4.2 и 1.7.1.3).  
1.6.4.2.  Физикохимични  характеристики  
Почвата  ръчно  се почиства  от големи  предмети  (напр . камъни , 
части  от растения  и др.) и тогава  влагата  се филтрира , без 
допълнително  сушене , при размер  на частиците , по-малък  или 
равен  на 2 mm. Съдържанието  на влага  в почвената  проба  
трябва  да бъде  регулирано  с дестилирана  или дейонизирана  
вода  до стойност  между  40 % и 60 % от максималната  
способност  за задържане  на вода . 
1.6.5.  Подготовка  на изпитваното  вещество  за прилагане  в 
почвата  
Изпитваното  вещество  обикновено  се прилага  чрез използване  
на носител . Носителят  може  да бъде  вода  (за водоразтворими  
вещества ) или инертно  твърдо  вещество , като фин кварцов  
пясък  (размер  на частиците : 0,1—0,5 mm). Употребата  на 
течни  носители , различни  от вода  (напр . органични  разт­  
ворители , такива  като ацетон , хлороформ ), трябва  да бъде  
избягвана , тъй като те могат  да увредят  микрофлората . Ако 
като носител  са използва  пясък , той може  да бъде  покрит  с 
разтвореното  или суспендирано  в подходящ  разтворител  
изпитвано  вещество . В такива  случаи  разтворителят  трябва  да 
бъде  отстранен  чрез изпаряване  преди  смесването  с почва . За 
оптимално  разпределение  на изпитваното  вещество  в почвата  
се препоръчва  да се използва  съотношение  10 g пясък  на 
килограм  почва  (сухо  тегло ). Контролните  проби  се третират  
само  с еквивалентни  количества  вода  и/или кварцов  пясък . 
Когато  се изпитват  летливи  химикали , при провеждането  на 
експеримента  трябва  да бъдат  избегнати  загубите  и 
експериментът  трябва  да бъде  проведен  при осигурено  
хомогенно  разпределение  в почвата  (напр . изпитваното  
вещество  трябва  да бъде  впръскано /вкарано  в почвата  на 
няколко  места ). 
1.6.6.  Изпитвани  концентрации  
Ако се изпитват  агрохимикали  или други  химикали  с предвидими  
концентрации  в околната  среда , трябва  да се използват  поне  две 
концентрации . Трябва  да се въздейства  с по-ниската  концентрация . 
По-ниската  концентрация  рефлектира  най-малко  на максималното  
количество , което  се очаква  да достигне  почвата  при условията  на 
експеримента , като се има предвид , че по-високата  концентрация  
трябва  да бъде  кратна  на по-ниската  концентрация . Конце­  
нтрациите  на изпитваното  вещество , добавяно  към почвата , се 
изчисляват , като се приема , че има еднакво  смесване  в дълбочина  
от 5 cm и плътност  на насипната  почва  1,5. За агрохимикали , които  
се прилагат  директно  в почвата , или за химикали , за които  може  да 
бъде  предвидено  достигнатото  количество  в почвата , се препоръчва  
като изпитвани  концентрации  да се използват  максимално  
предвижданите  концентрации  в околната  среда  (РЕС) и пет 
времена  за концентрация . Веществата , които  се очаква  да бъдат  
прилагани  в почвата  неколкократно  за един  сезон , трябва  да 
бъдат  изпитвани  при концентрации , получени  от умножението  на 
РЕС и очаквания  максимален  брой  апликации . По-високата  конце­  
нтрация  обаче  не трябва  да превишава  с повече  от десет  пъти  стой­  
ността  на максималното  еднократно  прилагано  ниво . 
Ако не се изпитват  агрохимикали , се използват  геометрични  
серии  от поне  пет концентрации . Изпитваните  концентрации  
трябва  да покриват  обхвата , необходим  за определянето  на стой­  
ностите  на ЕС х . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1285
 
1.7. ПРОВЕЖДАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
1.7.1.  Условия  на експозиция  
1.7.1.1.  Третиране  и контрол  
Ако се изпитват  агрохимикали , почвата  се разделя  на три части  
с еднаква  маса . Двете  части  се смесват  с носителя , съдържащ  
продукта , а другата  част се смесва  с носителя , който  не съдържа  
продукта  (контрола ). Препоръчва  се използването  на минимум  
три реплики  на двете  третирани  и нетретираната  почвена  проба . 
Ако не се изпитват  агрохимикали , почвата  се разделя  на шест  
части  с еднаква  маса . Пет от пробите  се смесват  с носителя , 
съдържащ  изпитваното  вещество , а шестата  проба  се изпитва  с 
носителя , не съдържащ  химикала . Препоръчва  се използването  
на минимум  три реплики  на двете  третирани  проби  и 
контролата . Трябва  да се обърне  внимание  на осигуряването  
на хомогенно  разпределение  на изпитваното  вещество  в 
третираните  почвени  проби . По време  на смесването  трябва  да 
бъде  избягвано  сбиването  или кълбообразното  натрупване  на 
почвата . 
1.7.1.2.  Инкубация  на почвени  проби  
Инкубация  на почвените  проби  може  да бъде  извършена  по два 
начина : като насипни  проби  от всяка  третирана  и нетретирана  
почва  или като серия  от индивидуални  и с еднаква  маса  
подпроби  от всяка  третирана  и нетретирана  почва . Когато  обаче  
се изпитват  летливи  вещества , се извършва  изпитване  само  със 
серия  от индивидуални  подпроби . Когато  се инкубират  почви  в 
насипно  количество , се приготвят  големи  количества  от всички  
третирани  и нетретирани  почви  и за подпробите , които  ще се 
анализират , се взема  такова  количество , каквото  е необходимо  
за провеждане  на изпитването . Първоначално  приготвеното  
количество  за всяко  третиране  и контрола  зависи  от големината  
на подпробите , броя  на използваните  при анализа  реплики  и макс­  
ималния  очакван  брой  на времената  за изпитване . Почвите , които  
се инкубират  в насипно  количество , трябва  да бъдат  напълно  
смесени  (хомогенизирани ) преди  отделянето  на подпробите . 
Когато  почвите  се инкубират  като серия  от индивидуални  
почвени  проби , всяка  третирана  или нетретирана  почвена  проба  
в насипно  количество  се разделя  на необходимия  брой  подпроби  и 
те се използват , както  е необходимо . При експериментите , при 
които  се очакват  повече  от две времена  на изпитване , трябва  да 
бъдат  приготвени  достатъчно  подпроби , за да бъдат  отчетени  
всички  реплики  и всички  времена  на изпитване . Поне  три 
повтарящи  се проби  (реплики ) трябва  да бъдат  инкубирани  при 
аеробни  условия  (вж. точка  1.7.1.1). По време  на всички  
изпитвания  трябва  да бъдат  използвани  подходящи  контейнери  с 
достатъчно  пространство  в горния  си край , за да се избегне  възн­  
икването  на анаеробни  условия . Когато  се изпитват  летливи  
вещества , изпитването  трябва  да бъде  проведено  само  при серия  
индивидуални  подпроби . 
1.7.1.3.  Условия  и продължителност  на изпитването  
Изпитването  се провежда  на тъмно  при стайна  температура  
20 + 2  o С. Съдържанието  на влага  в почвените  образци  трябва  
да бъде  поддържано  по време  на изпитването  между  40 % и 
60 % от максималната  способност  на почвата  да задържа  вода  
(вж. точка  1.6.4.2) в обхвата  ± 5 %. Добавя  се дестилирана  
дейонизирана  вода , ако е необходимо . Минималната  продължит­  
елност  на изпитванията  е 28 дни. 
Ако се изпитват  агрохимикали , количествата  на отделения  
въглероден  диоксид  или на погълнатия  кислород  в третираните  
и контролните  проби  се сравняват . Ако те се различават  с 
повече  от 25 % на 28-ия ден, изпитването  продължава , докато  
се получи  разлика , равна  или по-малка  от 25 %, или за 
максимум  100 дни, която  е по-малка . Ако не се изпитват  агрох­  
имикали , изпитването  завършва  след  28-ия ден. На 28-ия ден се 
определя  количеството  на отделения  въглероден  диоксид  или на 
погълнатия  кислород  в третираните  и контролните  почвени  
проби  и се изчисляват  стойностите  на ЕС х . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1286
 
1.7.2.  Вземане  на проби  и анализ  на почви  
1.7.2.1.  Схема  за вземане  на почвени  проби  
Ако се изпитват  агрохимикали , почвените  проби  се анализират  
за нива  на глюкозно  предизвиканата  респирация  през деня  0, 7- 
ия, 14-ия и 28-ия ден. Ако е необходимо  удължаване  на 
изпитването , трябва  да бъдат  направени  допълнителни  
измервания  през 14-дневни  интервали  след  28-ия ден. 
Ако не се изпитват  агрохимикали , се използват  поне  пет 
изпитвани  концентрации  и почвените  проби  се анализират  за 
глюкозно  предизвикана  респирация  в началото  (ден 0) и в 
края  на периода  на експозиция  (28 дни). Може  да бъде  
направено  внезапно  измерване , напр . през 7-ия ден, ако 
изглежда  необходимо . Данните , получени  на 28-ия ден, се 
използват  за определяне  стойността  на ЕС х за химикала . Ако 
желаете , данните  от ден 0 на контролните  проби  също  могат  
да бъдат  използвани  за оценяване  на първоначалното  количество  
на метаболично -активната  микробиална  биомаса  в почвата  (12).  
1.7.2.2.  Измерване  на нивата  на глюкозно - предизвиканата  респирация  
Ниво  на глюкозно  предизвиканата  респирация  се определя  за 
всяка  третирана  и контролна  реплика  за всяко  време  на всяка  
проба . Почвените  проби  се смесват  с допълнително  количество  
глюкоза , за да се предизвика  незабавен  максимален  
респираторен  отговор . Количеството  глюкоза , необходимо  за 
предизвикването  на максимален  респираторен  отговор  от 
дадена  почва , може  да бъде  определено  при предварителни  
изпитвания  чрез използването  на серия  глюкозни  концентрации  
(14). Въпреки  това при пясъчни  почви  с 0,5—1,5 % органичен  
въглерод , от 2 000 mg до 4 000 mg глюкоза  за kg сухо  тегло  
почва , определено  са достатъчни . Глюкозата  може  да бъде  
стрита  на пудра  с чист  кварцов  пясък  (10 g пясък /kg сухо  
тегло  почва ) и хомогенно  смесена  с почва . 
Изменените  с глюкозата  почвени  проби  са инкубирани  в 
подходяща  апаратура  за продължително  измерване  на 
респираторните  нива  на всеки  час или на всеки  два часа (вж. 
точка  1.6.1) при 20 ± 2  o С. Отделянето  на въглероден  диоксид  
или поглъщането  на кислород  се измерва  в продължение  на 12 
поредни  часа и измерванията  трябва  да започнат  колкото  е 
възможно  по-рано , т.е. в рамките  на 1 до 2 часа след  
прибавянето  на глюкозата . Общото  количество  на отделения  
въглероден  диоксид  или погълнатият  кислород  през тези 12 
часа се измерва  и се определят  средните  респираторни  нива . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Ако се изпитват  агрохимикали , отделяният  въглероден  диоксид  
или поглъщаният  кислород  се записват  за всяка  повтаряща  се 
почвена  проба  (реплика ), а средните  стойности  на всички  
реплики  трябва  да бъдат  представени  в таблична  форма . 
Резултатите  трябва  да бъдат  оценявани  чрез подходящи  и 
общоприемливи  статистически  методи  (напр . F-тест, 5 % ниво  
на значимост ). Нивата  на глюкозно  предизвиканата  респирация  
се изразяват  в mg въглероден  диоксид /kg сухо  тегло  почва /h или 
mg кислород /сухо  тегло  почва /h. Средното  ниво  на образувания  
въглероден  диоксид  или средното  ниво  на погълнатия  кислород  
при всяко  третиране  се сравнява  с това на контролата  и се 
изчислява  процентното  отклонение  от контролата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1287
 
Ако изпитванията  не са проведени  с агрохимикали , колич­  
еството  на отделения  въглероден  диоксид  или на погълнатия  
кислород  се определя  за всяка  реплика  и се изготвя  крива  
доза-отговор  за оценка  на стойностите  на ЕС х . Нивата  на 
глюкозно  предизвиканата  респирация  (т.е. mg въглероден  
диоксид /kg сухо  тегло  почва /h или mg кислород /сухо  тегло  
почва /h), открити  в третираните  проби  след  28 дни, се 
сравняват  с тези, открити  в контролите . От тези данни  се 
изчисляват  процентните  стойности  на задържане  за всяка  
изпитана  концентрация . Тези  проценти  се разпределят  спрямо  
концентрацията  и се използват  статистически  процедури  за изчис­  
ляване  на стойностите  на ЕС х . Доверителните  интервали  (р = 0,95) 
за изчислените  ЕС х също  се определят  чрез използване  на 
стандартни  процедури  (15) (16) (17).  
2.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
При оценяване  на резултатите  от изпитванията  с агрохимикали , 
когато  разликата  в респираторните  нива  между  по-слабото  
третиране  (т.е. максималната  предвиждана  концентрация ) и 
контролата  е по-малка  или равна  на 25 % по всяко  време  за 
вземане  на проби  след  28-ия ден, продуктът  може  да бъде  
оценен  като такъв , който  няма  дълготрайно  влияние  върху  
преобразуването  на въглерода  в почвите . Когато  се оценяват  
резултати  от изпитвания  с химикали , различни  от агрохимик­  
алите , се използват  стойностите  на ЕС 50 , EC  25 и/или ЕС 10 . 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  
информация : 
Пълно  идентифициране  на използваната  почва , което  включва : 
— географско  положение  на мястото  (географска  ширина , 
географска  дължина ); 
— историческа  информация  за мястото  (т.е. покриваща  раст­  
ителност , третиране  с продукти  за защита  на зърнените  
култури , третиране  с торове , аварийно  замърсяване  и др.); 
— употреба  на образци  (напр . земеделска  почва , гора и др.); 
— дълбочина  на вземане  на пробата  (cm);  
— съдържание  на пясък /тиня /глина  ( % сухо  тегло ); 
— рН (във вода ); 
— съдържание  на органичен  въглерод  ( % сухо  тегло ); 
— съдържание  на азот ( % сухо  тегло ); 
— способност  за катионен  обмен  (mmol/kg);  
— начална  микробна  биомаса  в процентно  съотношение  с 
общия  органичен  въглерод ; 
— референции  на използваните  методи  за определянето  на 
всеки  параметър ; 
— цялата  информация , свързана  със събирането  и съхранението  
на почвени  проби ; 
— подробности  за предварителната  инкубация  на почвата , ако 
има. ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1288
 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  и, където  е подходящо , физикохимични  
свойства ; 
— данни  за идентичността  на химикала , където  е подходящо , 
включително  структурна  формула , чистота  (т.е. за продукти  
за защита  на зърнени  култури  – процент  на активната  
съставка ), съдържание  на азот. 
Условия  на изпитването : 
— подробности  за замяната  на почвата  с органичен  субстрат ; 
— брой  на използваните  концентрации  на изпитваното  
вещество  и, където  е подходящо , обосноваване  на 
избраните  концентрации ; 
— подробности  около  апликирането  на изпитваното  вещество  в 
почвата ; 
— инкубационна  температура ; 
— съдържание  на влага  в почвата  при започване  и по време  на 
изпитването ; 
— метод  на инкубация  на използваната  почва  (т.е. в насипно  
количество  или като серия  от индивидуални  почвени  
подпроби ); 
— брой  на репликите  (повтарящи  се почвени  проби ); 
— времена  при вземане  на пробите . 
Резултати : 
— използвани  метод  и оборудване  за измерване  на 
респираторните  нива ; 
— таблични  данни , включващи  индивидуални  и средни  
стойности  за количествата  на въглеродния  диоксид  или 
кислорода ; 
— отклонения  между  репликите  в третираните  и контролните  
проби ; 
— обяснения  на направените  корекции  в изчисленията , ако е 
подходящо ; 
— процентни  отклонения  в нивата  на глюкозно  предизвиканата  
респирация  за всяко  време  на вземане  на проби  или, ако е 
подходящо , ЕС 50 c 95 % потвърдено  ограничение , други  ЕС х 
(т.е. ЕС 25 или ЕС 10 ) с доверителни  интервали , и графика  на 
кривата  доза-отговор ; 
— статистическо  обработване  на резултатите , където  е 
подходящо ; 
— цялата  информация  и наблюдения , подпомагащи  
интерпретирането  на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) EPPO (1994). Decision-Making Scheme for the Environmental 
Risk Assessment of Plant Protection Chemicals. Chapter 7: 
Soil Microflora. EPPO Bulletin 24: 1—16, 1994.  
(2) BBA (1990). Effects on the Activity of the Soil Microflora. 
BBA Guidelines for the Official Testing of Plant Protection Products, VI, 1—1 (2nd eds., 1990).
 
(3) EPA (1987). Soil Microbial Community Toxicity Test. EPA 40 
CFR Part 797.3700. Toxic Substances Control Act Test Guide ­
lines; Proposed rule. September 28, 1987.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1289
 
(4) SETAC-Europe (1995). Procedures for assessing the environ ­
mental fate and ecotoxicity of pesticides, Ed. M.R. Lynch, 
Pub. SET AC-Europe, Brussels.  
(5) OECD (1995). Final Report of the OECD Workshop on 
Selection of Soils/Sediments, Belgirate, Italy, 18—20 January 1995.
 
(6) ISO 10381-6 (1993). Soil quality — Sampling. Guidance on 
the collection, handling and storage of soil for the assessment 
of aerobic microbial processes in the laboratory.  
(7) Anderson, J.P.E. (1987). Handling and Storage of Soils for 
Pesticide Experiments, in „Pesticide Effects on Soil Microf ­
lora“. Eds. L. Somerville and M.P. Greaves, Chap. 3: 45—60.  
(8) Anderson, J.P.E. (1982). Soil Respiration, in „Methods of Soil 
Analysis — Part 2: Chemical and Microbiological Properties“. Agronomy Monograph № 9. Eds. A.L. Page, R.H. Miller and 
D.R.Keeney. 41: 831—871.
 
(9) ISO 11266-1. (1993). Soil Quality — Guidance on Laboratory 
Tests for Biodegradation in Soil: Part 1.Aerobic Conditions.  
(10) ISO 14239 (1997E). Soil Quality — Laboratory incubation 
systems for measuring the mineralization of organic chemicals in soil under aerobic conditions.
 
(11) Heinemeye, r O., Insam, H., Kaiser, E. A, and Walenzik, G. 
(1989). Soil microbial biomass and respiration measurements; 
an automated technique based on infrared gas analyses. Plant and Soil, 116: 77—81.
 
(12) ISO 14240-1 (1997). Soil quality — Determination of soil 
microbial biomass — Part 1: Substrateinduced respiration 
method.  
(13) ISO 14240-2 (1997). Soil quality — Determination of soil 
microbial biomass — Part 2: Fumigationextraction method.  
(14) Malkomes, H.- P. (1986). Einfluu von Glukosemenge auf die 
Reaktion der Kurzzeit-Atmung im Boden Gegenbber Pflanzen ­
schutzmitteln, Dargestellt am Beispiel eines Herbizide. (Influence of the Amount of Glucose Added to the Soil on the Effect of Pesticides in Short-Term Respiration, using a 
Herbicide as an Example). Nachrichtenbl. Deut. Pflanzen ­
schutzd., Braunschweig, 38: 113—120.
 
(15) Litchfield, J. T. and Wilcoxon, F. (1949). A simplified method 
of evaluating dose-effect experiments. Jour. Pharmacol. and Exper. Ther., 96, 99—113.
 
(16) Finney, D. J. (1971). Probit Analysis. 3rd ed., Cambridge, 
London and New-York.  
(17) Finney D. J. (1978). Statistical Methods in biological Assay. 
Griffin, Weycombe, UK.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1290
 
В.23. АЕРОБНА  И АНАЕРОБНА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  В ПОЧВИ  
1. ME ТОД  
Този  метод  е идентичен  с ОECD TG 307 (2002)  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Този  метод  за изпитване  се основава  на съществуващите  ръко­  
водства  (1) (2) (3) (4) (5) (6) (7) (8) (9). Методът , описан  в 
настоящия  метод  за изпитване , е предназначен  за оценяване  на 
аеробната  и анаеробната  трансформация  на химикали  в почви . 
Провеждането  на експериментите  има за цел да се определят : i) 
степента  на трансформация  на изпитваното  вещество , и ii) видът  
и нивата  на образуване  и намаляване  на продуктите  от транс­  
формацията , на които  растителните  и почвените  организми  
могат  да бъдат  изложени . Такива  изпитвания  се изискват  за 
химикали , които  директно  се прилагат  в почвата  или които  е 
вероятно  да достигнат  до почвата  при условията  на околната  
среда . При разработване  на пробите  могат  също  да бъдат  
използвани  резултатите  от тези лабораторни  изпитвания  и анал­  
итичните  протоколи  от подобни  изпитвания  в тази област . 
Аеробни  и анаеробни  изпитвания  с един  вид почва  като цяло  са 
достатъчни  за оценяване  на пътищата  на трансформация  (8) (10) 
(11). Нивата  на трансформация  трябва  да бъдат  определени  при 
поне  три допълнителни  почви  (8) (10).  
Семинарът  на ОИСР  за избор  на почви  и седименти , проведен  в 
Belgirate, Италия , през 1995 г. (10), приема  по-специално  броя  и 
вида  на почвите , използвани  при настоящото  изпитване . 
Видовете  изпитвани  почви  трябва  да бъдат  представителни  за 
условията  на околната  среда , при които  ще се използват  или 
ще бъдат  изхвърлени . Например  химикали , които  могат  да 
бъдат  изпуснати  (отделени ) при условията  на субтропичен  до 
тропичен  климат , трябва  да бъдат  изпитвани  с Ferrasols или 
Nitosols (FAO система ). На семинара  също  са представени  
препоръки , основани  на Ръководството  на ISO (15) за 
събиране , обработване  и съхранение  на почвените  проби . В 
този метод  се приема  също  използването  на почви  от оризища . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Изпитвано  вещество : всяко  вещество , независимо  от това, дали  
е изходно  съединение  или съответен  продукт  от транс­  
формацията . 
Продукти  от трансформацията : всички  вещества , получени  в 
резултат  на реакциите  при биотични  и абиотични  транс­  
формации  на изпитваното  вещество , включително  СО 2 и прод­  
уктите , които  са в крайните  остатъци . 
Крайни  остатъци : представляват  съединения  в почвата , 
растенията  или животните , които  остават  в матрицата  под 
формата  на изходно  вещество  или негов (и) метаболит (и)/­ 
продукт , получен  при трансформацията  след  екстрахиране . 
Методът  за екстрахиране  не трябва  съществено  да изменя  
самите  съединения  или структурата  на матрицата . Би могло  
донякъде  (частично ) да се изясни  природата  на връзката  чрез 
прилагане  на екстракционни  методи  с промяна  на матрицата  и 
на сложни  аналитични  техники . Например  по този начин  се 
идентифицират  ковалентни  йонни  и сорбционни  връзки , а така 
също  и включванията  (примеси ). Най-общо , образуването  на 
крайни  остатъци  намалява  значително  биологичния  достъп  и 
биологичната  наличност  (12) [изменено  от IUPAC 1984 (13)].  
Аеробна  трансформация : реакциите  протичат  в присъствието  
на молекулен  кислород  (14).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1291
 
Анаеробна  трансформация : реакциите  протичат  в отсъствието  
на молекулен  кислород  (14).  
Почва : е смес  от минерални  и органични  химични  съста­  
вки\компоненти , които  съдържат  съединения  с високо  
съдържание  на въглерод  и азот в тях и с високи  молекулни  
маси , състоящи  се от живи  малки  (предимно  микро -) организми . 
Почвата  може  да бъде  третирана  в две състояния : 
а) необработено , като тя се разработва  с времето , в определени  
пластове  на различните  типове  почви ; 
б) обработено , като тя се намира  обикновено  в разораните  
площи  или когато  пробите  са взети  чрез разкопаване  и се 
използват  в този метод  за изпитване  (14).  
Минерализация : е пълното  разграждане  на органично  
съединение  до СО 2 и Н 2 О при аеробни  условия  и до СН 4 , 
СО 2 и Н 2 О при анаеробни  условия . В контекста  на този метод  
за изпитване , когато  се използва  съединение , което  е маркирано  
с 14 С, минерализация  означава  пълното  разграждане , по време  
на което  маркиран  въглероден  атом  се окислява , при което  се 
отделя  съответното  количество  14 СО 2 (14).  
Време  на полуразпад : t 0,5, е времето , при което  е достигната  
50 % трансформация  на изпитвано  вещество , когато  транс­  
формацията  може  да бъде  описана  чрез кинетика  от първи  
ред; той не зависи  от концентрацията . 
DT 50 (време  на изчезване  50):  е времето , за което  конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  намалява  с 50 %; То е 
различно  от времето  на полуразпад  t 0,5, тъй като транс­  
формацията  не следва  кинетика  от първи  ред. 
DT 75 (време  на изчезване  75):  е времето , за което  конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  намалява  със 75 %.  
DT 90 (време  на изчезване  90):  е времето , за което  конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  намалява  с 90 %.  
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
За охарактеризиране  и/или идентифициране  на продуктите  от 
трансформацията  трябва  да бъдат  използвани  вещества  за 
сравнение  в съответните  спектроскопски  и хроматографски  
методи . 
1.4. ПРИЛОЖИМОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Този  метод  е приложим  за всички  химични  вещества  
(немаркирани  или с маркиран  радиоактивен  изотоп ), за които  
има аналитичен  метод  с достатъчна  точност  и чувствителност . 
Той е приложим  за слабо  летливи , нелетливи , водоразтворими  
или водонеразтворими  съединения . Изпитването  не трябва  да 
бъде  прилагано  за химикали , които  са силно  летливи  при 
прилагане  върху  почви  (напр . дезинфекционни  средства , 
органични  разтворители ), и поради  това не биха  могли  да 
бъдат  запазени  в почвата  при експерименталните  условия  на 
настоящото  изпитване . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1292
 
1.5. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
За измерване  на степента  на трансформация  могат  да бъдат  
използвани  немаркирани  или маркирани  изпитвани  вещества . 
Необходимо  е използването  на маркиран  материал  за 
проследяване  на пътя  на трансформация  и за установяване  на 
масовия  баланс . Препоръчва  се маркиране  14 С, но употребата  на 
други  изотопи , такива  като  13 С, 15 N, 3 H, 32 Р, също  може  да бъде  
от полза . Доколкото  е възможно , етикетът  трябва  да бъде  
поставен  върху  най-стабилната (ите) част(и) на молекулата  ( 1 ). 
Изпитваното  вещество  трябва  да бъде  със степен  на чистота  
минимум  95 %.  
Преди  извършване  на изпитването  за аеробна  и анаеробна  транс­  
формация  в почви  трябва  да бъде  осигурена  следната  
информация  за изпитваното  вещество : 
а) разтворимост  във вода  (метод  А. 6); 
б) разтворимост  в органични  разтворители ; 
в) парно  налягане  (метод  А.4) и константата  на Хенри ; 
г) коефициент  на съотношението  n-октанол /вода  (метод  А.8); 
д) химична  стабилност  на тъмно  (хидролиза ) (метод  В.7); 
е) рК а , ако молекула  е подложена  на реакция , свързана  
с приемане  или отнемане  на протон  [Ръководство  на 
ОИСР  112] (16).  
Друга  полезна  информация  може  да включва  данни  за токсич­  
ността  на изпитваното  вещество  при почвените  микроорганизми  
(Методи  за изпитване  В.21 и В.22) (16).  
Трябва  да има налични  аналитични  методи  (включително  
методи  за екстракция  и почистване ) за количествено  определяне  
и идентифициране  на изпитваното  вещество  и неговите  
продукти  от трансформацията . 
1.6. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Почвените  проби  се третират  с изпитваното  вещество  и се 
инкубират  на тъмно  в колби  биометричен  вид или в проточни  
системи  при контролирани  лабораторни  условия  (като постоянна  
температура  и влажност  на почвата ). След  подходящи  интервали  
от време  почвените  проби  се екстрахират  и анализират  за 
изходното  вещество  и за продукти  от трансформацията . 
Летливите  продукти  също  се събират  за анализ  чрез използване  
на подходящи  абсорбционни  уреди . Когато  се използва  
материал , маркиран  с 14 С, могат  да бъдат  измерени  различни  
степени  на минерализация  на изпитваното  вещество  чрез 
улавяне  на отделяния  14 СО 2 и чрез масовия  баланс , включително  
може  да бъде  установено  образуването  на остатъчни  количества  
в почвата . 
1.7. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
1.7.1.  Възстановяване  
Екстрахиране  и анализиране  на най-малко  две почвени  проби  
веднага  след  добавяне  на изпитваното  вещество  дава първон­  
ачална  индикация  за повторяемостта  на аналитичния  метод  и 
за еднаквото  прилагане  на апликационната  процедура  при 
изпитваното  вещество . Възстановяванията  на по-късните  етапи  
на експеримента  се представят  чрез съответните  масови  баланси . 
Възстановяванията  трябва  да бъдат  в обхвата  от 90 % до 110 % 
за маркирани  химикали  (8) и от 70 % до 110 % за немаркирани  
химикали  (3). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1293  
( 1 ) Например , ако изпитваното  вещество  съдържа  един  пръстен , се изисква  маркиране  
на този пръстен ; ако изпитваното  вещество  съдържа  два или повече  пръстена , може  
да са необходими  отделни  изследвания  за оценяване  „жизнения  цикъл “ на всеки  
маркиран  пръстен , за да се придобие  подходяща  информация  за образуването  на 
продуктите  от трансформацията .
 1.7.2.  Повторяемост  и чувствителност  на аналитичния  метод  
Повторяемостта  на аналитичния  метод  (с изключение  на първон­  
ачалната  екстракционна  ефективност ) за количествено  
определяне  на изпитваното  вещество  и продуктите  от транс­  
формацията  може  да бъде  проверена  чрез дублиращи  се 
анализи  на един  и същ почвен  екстракт , инкубиран  достатъчно  
дълъг  период  от време , за да се образуват  продукти  от транс­  
формацията . 
Границата  на аналитичния  метод  за откриване  (LOD) на 
изпитваното  вещество  и на продуктите  от трансформацията  
трябва  да бъде  по-ниската  стойност  от поне  0,01 mg.kg  -l почва  
(като изпитвано  вещество ) или от 1 % от приложената  доза. 
Трябва  да бъде  определена  също  и границата  за количествено  
определяне  на метода  (LOQ).  
1.7.3.  Прецизност  на данните  от трансформацията  
Регресионният  анализ  на концентрациите  на изпитваното  
вещество  като функция  от времето  дава подходяща  информация  
за надеждността  на кривата  на трансформация  и позволява  да се 
изчислят  доверителните  интервали  на полуразпада  (в случай  на 
псевдокинетика  от първи  ред) или стойностите  на DT  50 и, ако е 
подходящо , стойностите  на DT  75 и DT  90 . 
1.8. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
1.8.1.  Оборудване  и химични  реагенти  
Инкубационните  системи  са статични  затворени  системи  или 
подходящи  проточни  системи  (7) (17). На фигури  1 и 2 
са показани  примери  на проточна  апаратура , подходяща  за 
инкубиране  на почви , и съответно  биометричен  тип колба . И 
двата  вида  инкубационни  системи  имат  предимства  и недо­  
статъци  (7) (17).  
Изисква  се стандартно  лабораторно  оборудване , и по-специално : 
— аналитични  инструменти , като GLC, HPLC, TLC оборудване , 
включително  подходяща  система  за откриване  на 
анализирани  с маркиран  радиоактивен  изотоп  или 
немаркирани  вещества  или противоположен  метод  с 
разреждане  на изотопи ; 
— инструменти , използвани  за целите  на идентификацията  
(напр . MS, GC-MS, HPLC-MS, NMR и др.); 
— течен  сцинтилационен  брояч  (детектор ); 
— окислител  за изгаряне  на радиоактивни  материали ; 
— центруфуга ; 
— екстракционна  апаратура  (например  центрофужни  епруветки  
за студена  екстракция  и Soxhlet апаратура  за продължително  
екстрахиране  при нагряване  с обратен  хладник ); 
— инструментариум  за концентриране  на разтвори  и екстракти  
(напр . ротационен  изпарител ); 
— водна  баня ; 
— механично  смесващо  устройство  (напр . месилна  
(разбъркваща ) машина , ротационен  миксер ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1294
 
Като  химични  реагенти  се използват  например : 
— NaOH, аналитически  чиста  за анализ , 2 mol.dm  -3 или друга  
подходяща  основа  (напр . КОН , етаноламин ); 
— H  2 SO 4 , аналитически  чиста  за анализ , 0,05 mol.dm  -3 ; 
— етилен  гликол , аналитически  чист  за анализ ; 
— твърди  абсорбционни  материали , такива  като натронкалк  
(смес  от натриев  хидроксид  и вар) и полиуретанови  тапи ; 
— органични  разтворители , аналитически  чисти  за анализ , 
такива  като ацетон , метанол  и др.; 
— сцинтилационна  течност . 
1.8.2.  Прилагане  на веществото  за изпитване  
За прибавяне  и разпространение  в почвата  изпитваното  
вещество  може  да бъде  разтворено  във вода  (дейонизирана  
или дестилирана ) или, когато  е необходимо , в минимални  
количества  ацетон  или други  органични  разтворители  (6), в 
които  изпитваното  вещество  е достатъчно  разтворимо  и 
стабилно . Въпреки  това количеството  на избрания  разтворител  
не трябва  да оказва  значително  влияние  върху  микробната  
активност  в почвата  (вж. точки  1.5, 1.9.2 и 1.9.3). Трябва  да се 
избягва  употребата  на такива  разтворители , като хлороформ , 
дихлорметан  и други  халогенирани  разтворители , които  
възпрепятстват  (инхибират ) микробната  активност . 
Изпитваното  вещество  може  също  да бъде  добавено  в твърд  вид 
(агрегатно  състояние ), напр . смесено  с кварцов  пясък  (6) или в 
малка  подпроба  от изпитваната  почва , която  се суши  на въздух  
и се стерилизира . Ако изпитваното  вещество  се добавя , като се 
използва  разтворител , разтворителят  трябва  да може  да бъде  
изпарен , преди  отделената  подпроба  да бъде  добавена  към 
първоначалната  нестерилна  почвена  проба . 
За обикновените  химикали , чийто  основен  път на постъпване  в 
почвата  е чрез канализационните  утайки /селскостопанска  
употреба , изпитваното  вещество  първо  трябва  да бъде  
добавено  към утайката , която  след  това се въвежда  в 
почвената  проба  (вж. точки  1.9.2 и 1.9.3).  
Употребата  на образуваните  продукти  обикновено  не се 
препоръчва . Въпреки  това обаче , напр . при слаборазтворими  
изпитвани  вещества , използването  на новообразуван  материал  
може  да бъде  подходяща  алтернатива . 
1.8.3.  Почви  
1.8.3.1.  Избор  на почва  
За определяне  пътя  (начина ) на трансформацията  може  да бъде  
използвана  „представителна “ почва ; Препоръчва  се да се 
използва  пясъчна  почва  или наносна  почва , или глина , или 
глинест  пясък  [съгласно  класификацията  на FAO и USD A 
(18)] с рН = 5,5—8,0, със съдържание  на органичен  въглерод  
0,5—2,5 % и с микробна  биомаса  най-малко  1 % от общия  
органичен  въглерод  (10).  
За установяване  степента  на трансформация  трябва  да бъдат  
използвани  поне  три допълнителни  почви , представляващи  
обхват  от съответните  почви . Почвите  трябва  да са с различно  
(вариращо ) съдържание  на техния  органичен  въглерод , рН, 
съдържание  на глина  и микробна  биомаса  (10).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1295
 
Всички  почви  трябва  да бъдат  охарактеризирани , поне  по 
отношение  на състава  им ( % пясък , % нанос , % глина ) 
[съгласно  класификацията  на FAO и USD A (18)], рН, 
способност  за катионен  обмен , органичен  въглерод , насипна  
плътност , способност  за задържане  на вода  ( 1 ) и микробна  
биомаса  (само  за аеробни  изпитвания ). Допълнителната  
информация  за свойствата  на почвата  може  да бъде  от полза  
при интерпретирането  на резултатите . За определянето  на 
характеристиките  на почвата , могат  да бъдат  използвани  
методите , препоръчани  в препратки  (19) (20) (21) (22) (23). 
Микробната  биомаса  трябва  да бъде  определена  чрез 
прилагане  на метода  на субстратно  индуцираната  респирация  
(SIR) (25) (26) или алтернативни  методи  (20).  
1.8.3.2.  Събиране , обработване  и съхранение  на почви  
Трябва  да има подробна  информация  за историята  (миналото ) на 
мястото  в полето , откъдето  е била  събрана  почвата  за изпитване . 
Подробностите  включват  точно  местоположение , растителна  
покривка , обработване  с химикали , третиране  с органични  и 
неорганични  торове , добавки  към биологични  материали  или 
друго  замърсяване . Ако почвите  са третирани  с изпитваното  
вещество  или с негов  структурен  аналог  през предходните  
четири  години , те не трябва  да бъдат  използвани  за изследвания  
на трансформацията  (10) (15).  
Почвата  трябва  да бъде  прясно  събрана  от полето  (от хоризонт  
А или от горния  20 cm слой ) с такова  водно  съдържание  в нея, 
което  да улеснява  пресяването . За почви , различни  от тези при 
наводнени  повърхности , вземането  на проби  трябва  да бъде  
избягвано  през или веднага  след  дълги  периоди  (> 30 дни) на 
засушаване , замръзване  или наводнение  (14). Почвите  трябва  да 
бъдат  транспортирани  по начин , който  свежда  до минимум  
загубите  на водно  съдържание  в почвата , и трябва  да бъдат  
държани  на тъмно , при свободен  достъп  до въздух , толкова  
дълго , колкото  е възможно . Обикновено  хлабаво  завързан  поли­  
етиленов  плик  (чувал ) е подходящ  за тази цел. 
Почвата  трябва  да бъде  използвана  възможно  най-бързо  след  
вземането  ѝ за проби . Растителността , по-големите  растителни  
части  и камъни  трябва  да бъдат  отстранени  преди  пресяването  
на почвата  през 2 mm сито , чрез което  се отстраняват  малки  
камъни , растения  и растителни  части . Трябва  да бъде  
избягвано  продължителното  сушене  и стриване  на почвата  
преди  пресяването  (15).  
Когато  вземането  на почвени  проби  от повърхността  е трудно  през 
зимата  (замръзнала  почва  или покрита  от пластове  сняг), проба  
може  да бъде  взета  от почвена  партида , съхранявана  в оранжерия  
под растителна  покривка  (напр . трева  или смесени  туфи  трева - 
детелина ). Силно  се препоръчва  провеждането  на изпитвания  с 
прясно  събрани  от полето  почви , но ако събраните  и обработени  
почви  трябва  да бъдат  съхранявани  преди  започване  на 
изпитването , условията  на съхранение  трябва  да бъдат  адекватно  
подбрани  и съхранението  да продължи  само  определен  период  от 
време  (4 ± 2  o С за максимум  три месеца ) за поддържане  на 
микробната  активност  ( 2 ). Подробни  инструкции  за събирането , 
обработването  и съхранението  на почви , които  ще бъдат  
използвани  при биотрансформационни  експерименти , могат  да 
бъдат  намерени  в (8) (10) (15) (26) (27).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1296  
( 1 ) Способността  на почвата  да задържа  вода  може  да бъде  измерена  като 
повърхностен  капацитет  или като водно  налягане  на всмукване  (pF). За 
обяснение  вж. приложение  1. В протоколите  от изпитването  трябва  да бъде  
отчетено  дали  характеристиките  на почвата , свързани  със способността  ѝ да 
задържа  вода , и насипната  ѝ плътност  са определени  в необработвани  
повърхностни  проби  или в обработвани  (преработени ) проби . 
( 2 ) Последните  резултати  от изследванията  показват , че почвите  от температурните  
зони  могат  също  да бъдат  съхранявани  при - 20  o С за повече  от три месеца  
(28)(29) без значителни  загуби  на микробната  активност .
 Преди  преработената  почва  да се използва  в това изпитване , 
трябва  да бъде  извършена  предварителна  инкубация , която  ще 
позволи  поникване  и отстраняване  на семената , и възста­  
новяване  на равновесието  в микробния  метаболизъм , изменено  
от вземането  на пробата  или условията  на съхранение  или 
инкубация . Общоприето  е прединкубационният  период  да трае 
между  2 и 28 дни при приблизително  поддържане  на условията  
— температура  и влажност  — като тези при реалното  изпитване  
(15). Периодът  на съхранение  и прединкубационният  период  
заедно  не трябва  да превишават  три месеца . 
1.9. ПРОВЕЖДАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
1.9.1.  Условия  на изпитването  
1.9.1.1.  Температура  на изпитването  
През  целия  период  от време  за провеждане  на изпитването  
почвите  трябва  да бъдат  инкубирани  на тъмно  при постоянна  
температура , представителна  за климатичните  условия , при 
които  ще се използва  или освобождава  веществото . Препоръчва  
се температурата  да е 20 ± 2  o С за всички  изпитвани  вещества , 
които  може  да поеме  почвата  при климатичните  температури . 
Температурата  трябва  да бъде  наблюдавана . 
За химикали , прилагани  или освобождавани  при по-студен  
климат  (напр . в северните  страни , през есенно -зимните  
периоди ), трябва  да бъдат  инкубирани  допълнителни  почвени  
проби , но при по-ниска  температура  (напр . 10 ± 2  o С). 
1.9.1.2.  Съдържание  на влага  
При изпитвания  на трансформацията  при аеробни  условия  
трябва  да бъде  установено  съдържанието  на влага  в почвата  ( 1 ) 
и влажността  да бъде  поддържана  при pF между  2,0 и 2,5 (3). 
Съдържанието  на влага  в почвата  се изразява  като маса  на 
водата  към маса  на сухата  почва  и трябва  регулярно  да бъде  
контролирано  (напр . на двуседмични  интервали  от време ) чрез 
претегляне  на инкубационните  колби  и компенсиране  на 
водните  загуби  чрез добавянето  на вода  (за предпочитане  
стерилно  филтрирана  чешмяна  вода ). Трябва  да бъде  отделено  
внимание  на предотвратяването  или минимизирането  на 
загубите  от изпитваното  вещество  и/или продуктите  от транс­  
формацията  чрез изпаряване  и/или фотолиза  (фоторазграждане ) 
(ако има) по време  на допълнителното  овлажняване . 
За изпитвания  на трансформацията  при анаеробни  и наводнени  
условия  почвата  е напоена  с вода  чрез наводняване . 
1.9.1.3.  Условия  за аеробно  инкубиране  
При проточни  системи  аеробни  условия  ще бъдат  поддържани  
чрез прекъсвания  за продухвания  или чрез продължително  
(непрекъснато ) проветряване  с влажен  въздух . В биометричните  
колби  обменът  на въздух  се поддържа  чрез дифузия . 
1.9.1.4.  Стерилни  аеробни  условия  
За да се получи  информация  за съответствието  на абиотичната  
трансформация  на изпитвано  вещество , почвените  проби  могат  
да бъдат  стерилизирани  (за методи  за стерилизация  вж. 
препратки  16 и 29), третирани  със стерилизираното  изпитвано  
вещество  (напр . добавяне  на разтвор  през стерилен  филтър ) и 
аерирани  с овлажнен  стерилен  въздух , както  е описано  в точка  
1.9.1.3. За наводнени  почви  почвата  и водата  трябва  да бъдат  
стерилизирани  и инкубацията  трябва  да бъде  проведена , както  е 
описано  в точка  1.9.1.6.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1297  
( 1 ) Почвата  не трябва  да бъде  нито  твърде  влажна , нито  прекалено  суха , за да се 
поддържат  подходящи  аерация  и хранене  на почвената  микрофлора . Препоръчва  
се съдържанието  на влага  в почвата  за оптимален  микробиален  растеж  да е в 
обхват  40 — 60 % за способността  за задържане  на вода  (WHC) и от 0,1 до 0,33 
bar (6). Последният  (от двата ) обхват  е еквивалентен  на pF обхвата  от 2,0 до 2,5. 
Характерните  стойности  на влажността  на различните  видове  почви  са посочени  в 
приложение  2.
 1.9.1.5.  Условия  за анаеробно  инкубиране  
За създаване  и поддържане  на анаеробни  условия  почвата , 
третирана  с изпитваното  вещество  и инкубирана  при аеробни  
условия  в продължение  на 30 дни или едно  време  на 
полуразпад , или DT  50 (което  е по-кратко ), е в 1 — 3 cm воден  
слой  и инкубационната  система  се продухва  с инертен  газ (напр . 
азот или аргон ) ( 1 ). Системата  за изпитване  трябва  да позволява  
измервания  на pH, концентрацията  на кислород  и редоксипоте­  
нциала , както  и да включва  улавящо  устройство  за летливите  
продукти . Биометричният  вид система  трябва  да е затворена , 
за да се избегне  проникването  на въздух  чрез дифузия . 
1.9.1.6.  Условия  за инкубиране  при наводняване  
За проучване  на трансформацията  в наводнени  оризови  почви  
почвата  се наводнява  с воден  слой , който  е с дебелина  около  1 
— 5 cm, и изпитваното  вещество  се прилага  във водната  фаза  
(9). Препоръчва  се почвата  да е с дълбочина  поне  5 cm. 
Системата  се проветрява  с въздух  както  при аеробните  
условия . pH, концентрацията  на кислород  и редоксипотенциалът  
на водния  слой  трябва  да бъдат  наблюдавани  и отчитани . Необ­  
ходимо  е да има поне  две седмици  прединкубационен  период  
преди  започването  на трансформационните  изпитвания  (вж. 
точка  1.8.3.2).  
1.9.1.7.  Продължителност  на изпитването  
Продължителността  (степента  и пътят  на протичане ) на 
изпитването  обикновено  не трябва  да превишава  120 дни ( 2 ) 
(3) (6) (8), тъй като след  това трябва  да се очаква  понижаване  
във времето  на почвената  микробна  активност  в изкуствено  
създадената  лабораторна  система , която  е изолирана  от 
естествено  допълване . Когато  е необходимо  за охарактеризиране  
намаляването  на изпитваното  вещество  и образуването  и 
намаляването  на основните  продукти  от трансформацията , 
изпитванията  могат  да бъдат  продължени  за по-дълъг  период  
от време  (напр . 6 или 12 месеца ) (8). По-дългите  инкубационни  
периоди  трябва  да бъдат  обосновани  в протокола  от изпитването  
и придружени  от измервания  на биомасата  по време  и в края  на 
тези периоди . 
1.9.2.  Провеждане  на изпитването  
Около  50 до 200 g почва  (на база сухо  тегло ) се поставят  във 
всяка  инкубационна  колба  (вж. фигури  1 и 2 от приложение  3) и 
почвата  се третира  с изпитваното  вещество  по един  от методите , 
описани  в точка  1.8.2. Когато  за апликиране  на изпитваното  
вещество  се използват  органични  разтворители , те трябва  да 
бъдат  отстранени  от почвата  чрез изпаряване . Тогава  почвата  
се смесва  напълно , като за това се използва  шпатула  и/или се 
разклаща  колбата . Ако изпитването  са провежда  при наводнени  
повърхностни  условия , почвата  и водата  трябва  да бъдат  
напълно  смесени  след  прилагането  на изпитваното  вещество . 
За да се провери  за хомогенното  разпределение  на изпитваното  
вещество , трябва  да бъдат  анализирани  малки  аликвоти  (напр . 
1 g) от третираните  почви  за изпитваното  вещество . За 
алтернативен  метод  вижте  по-долу . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1298  
( 1 ) Аеробните  условия  са доминиращи  при повърхностни  почви  и дори  при почви  под 
повърхността , както  е показано  в един  изследователски  проект , финансиран  от EU 
[К. Takagi et al. (1992). Microbial diversity and activity in subsoils: Methods, field site, 
seasonal variation in subsoil temperatures and oxygen contents. Proc. Internat. Symp. Environm. Aspects Pesticides Microbiol., 270-277, 17—21 August 1992, Sigtuna, 
Sweden]. Анаеробни  условия  могат  да възникнат  само  от време  на време  (случайно ) 
при наводнение  на почвите  след  тежки  проливни  валежи  от дъжд  или когато  се 
създадат  
наводнени  условия  в оризовите  полета . 
( 2 ) Аеробните  изпитвания  могат  да бъдат  приключени  в този момент  (много  преди  
осигурения  120-дневен  период ), при който  ясно  се констатира , че са достигнати  
крайният  път на трансформиране  и окончателната  минерализация . Приключване  на 
изпитването  е възможно  след 120 дни или при най-малко  90-процентна  трансформация  
на изпитваното  вещество , но само  когато  се е образувал  най-малко  5 % CO  2 .
 Нивото  на третиране  трябва  да съответства  на най-високото  
апликационно  ниво  на продукт  за защита  на зърнените  
култури , препоръчвано  в инструкциите  за употреба , и по един  
и същ начин  инкорпорирано  на подходяща  дълбочина  в полето  
(напр . най-горния  10 cm почвен  слой  ( 1 ). Например  за химикали , 
прилагани  върху  листата  или в почвата  без инкорпориране  
(смесване ), подходящата  дълбочина  за изчисляване  количеството  
химикал , което  трябва  да бъде  добавено  във всяка  колба , е 
2,5 cm. За инкорпорирани  в почвата  химикали  подходящата  
дълбочина  е определената  в инструкциите  за употреба  
дълбочина  за инкорпориране . За обикновени  химикали  апликац­  
ионното  ниво  трябва  да бъде  оценено  въз основа  на най- 
подходящия  път за въвеждане ; например  когато  основният  път 
на постъпване  в почвата  е чрез канализационните  утайки , 
химикалът  трябва  да бъде  дозиран  в утайката  с такава  конце­  
нтрация , която  да рефлектира  върху  очакваната  концентрация  на 
утайката , и количеството  на утайката , добавено  към почвата , 
трябва  да се отрази  (да повлияе ) нормално  на земеделските  
почви . Ако тази концентрация  не е достатъчно  висока  за идент­  
ифицирането  на основните  продукти  от трансформацията , може  
да бъде  от полза  инкубирането  на отделни  почвени  проби , 
съдържащи  по-високи  нива , като крайните  нива , влияещи  на 
микробните  функции  на почвата , трябва  да бъдат  избягвани  
(вж. точки  1.5 и 1.8.2).  
Алтернативно , по-големи  партиди  почва  (т.е. от 1 до 2 kg) могат  
да бъдат  третирани  с изпитваното  вещество  след  внимателно  
смесване  в подходящо  смесително  устройство  и впоследствие  
прехвърляни  на малки  порции  от 50 до 200 g в инкубационните  
колби  (например  с използването  на разделител  на пробите ). 
Малки  аликвотни  части  (напр . 1 g) от третираната  почвена  
партида  трябва  да се анализират  за изпитваното  вещество , за 
да се провери  еднородното  му разпределение . Предпочита  се 
тази процедура , тъй като позволява  по-равномерно  
разпределение  на изпитваното  вещество  в почвата . 
Така  също  нетретираните  почвени  проби  се инкубират  при 
същите  условия  (аеробни ) както  пробите , третирани  с 
изпитваното  вещество . Тези  проби  се използват  за измерване  
на биомасата  по време  и в края  на изпитванията . 
Когато  изпитваното  вещество  се прилага  в почвата , разтворено  в 
органичен (и) разтворител (и), почвените  проби , третирани  със 
същото  количество  разтворител (и), се инкубират  при същите  
условия  (аеробни ) както  пробите , третирани  с изпитваното  
вещество . Тези  проби  се използват  за измерване  на биомасата  
в началото , по време  и в края  на изпитванията , за да се провери  
влиянието  на разтворителя (ите) върху  микробната  биомаса . 
Колбите , съдържащи  третирани  почви , се прикрепят  към 
проточната  система , описана  във фигура  1, или се затварят  в 
абсорбционната  колона , показана  на фигура  2 (вж. 
приложение  3). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1299  
( 1 ) Началната  концентрация  се изчислява  въз основа  на следното  уравнение : 
C soil mg =kg soil ½ â ¼ A½kg=haâ·10 6 ½mg =kgâ 
l½mâ·10 4 ½m 2=haâ·d kg  soil=m 3 h i  
C soil = начална  концентрация  в почвата [mg.kg  -1 ] 
A = апликационно  ниво  [kg.ha  -1 ]; 1 = дебелина  на почвения  слой  на полето  [m]; 
d = насипна  плътност  на суха  почва  [kg.m  3 ]. 
Практическо  правило  за получаване  на резултати  е прилагане  на апликационно  
ниво  от 1 kg.ha  -1 при концентрации  в почвата  приблизително  1 mg.kg  -1 в 10 cm 
слой  (приема  се насипна  плътност  от 1 g.cm  3 ).
 1.9.3.  Вземане  на проби  и измервания  
Колби  с дублираща  се инкубация  се изваждат  на подходящи  
интервали  от време  и почвените  проби  се екстрахират  с 
подходящи  разтворители  с различен  поляритет  и се анализират  
за изпитваното  вещество  и/или продуктите  от трансформацията . 
Добре  подготвеното  (проектираното ) изпитване  включва  дост­  
атъчно  колби , така че две колби  да бъдат  „пожертвани “ при 
експеримента  с всяка  проба . Така  също  абсорбционните  
разтвори  или твърдите  абсорбционни  материали  се отстраняват  
на различни  интервали  от време  (7-дневни  интервали  през 
първия  месец  и след  един  месец  на 17-дневни  интервали ) по 
времето  и в края  на инкубацията  на всяка  почвена  проба  и 
анализиране  за летливи  продукти . Освен  почвена  проба , взета  
директно  (проба  от ден 0), трябва  да бъдат  включени  поне  5 
допълнителни  пробоотборни  точки . Времевите  интервали  
трябва  да бъдат  такива , че да могат  да бъдат  определени  
моделите  на запазване  на изпитваното  вещество  и моделите  на 
образуване  и запазване  на продуктите  от трансформацията  
(напр . 0, 1, 3, 7 дни; 2, 3 седмици ; 1, 2, 3 месеца  и т.н.). 
Когато  се използва  изпитвано  вещество , маркирано  с 14 С, неек­  
страхируемата  радиоактивност  ще бъде  количествено  
определена  чрез изгаряне  и за всеки  интервал  за проба  ще 
бъде  изчислен  масов  баланс . 
В случай  на анаеробна  и инкубация  при наводнение  почвената  и 
водната  фаза  се анализират  заедно  за изпитваното  вещество  и 
продукти  от трансформацията  или поотделно  чрез филтриране  
или центрофугиране  преди  екстрахиране  и анализиране . 
1.9.4.  Възможни  (незадължителни ) изпитвания  
За оценка  на влиянието  на температурата  и влагата  на почвата  
върху  степените  на трансформация  на изпитвано  вещество  и/или 
негови  продукти  от трансформация  в почвата  може  да бъде  от 
полза  провеждането  на аеробни  нестерилни  изпитвания  при 
допълнителни  температури  и влажности  на почвата . 
За по-нататъшно  охарактеризиране  на неекстрахируемата  радио­  
активност  например  може  да бъде  използвана  свръхкритична  
течна  екстракция . 
2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Количествата  на изпитваното  вещество , продуктите  от транс­  
формацията , летливите  вещества  (само  в проценти ) и неек­  
страхираните  остатъци  трябва  да бъдат  представени  като 
процент  от приложената  начална  концентрация  и, където  е 
подходящо , като mg.kg  -l почва  (основана  на сухо  претеглена  
почва ) за всеки  интервал  на проба . Трябва  да бъде  представен  
масов  баланс  като процент  на приложената  начална  конце­  
нтрация  за всеки  интервал  на проба . Графичното  представяне  
на концентрациите  на изпитваното  вещество  спрямо  времето  
ще позволи  да се направи  оценка  на времето  за достигане  на 
неговия  полуразпад  при трансформацията  или на DT  50 . 
Основните  продукти  от трансформацията  трябва  да бъдат  идент­  
ифицирани  и техните  концентрации  също  трябва  да бъдат  
графично  нанесени  спрямо  времето , за да се установят  техните  
степени  на образуване  и задържане . Основен  продукт  от транс­  
формацията  е всеки  продукт , представляващ  ≥ 10 % от прил­  
ожената  доза във всеки  момент  по време  на изпитването . 
Уловените  летливи  продукти  дават  някои  индикации  за потенци­  
алната  летливост  на изпитваното  вещество  и неговите  продукти  
от трансформацията  в почвата . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1300
 
По-точно  определяне  на стойностите  на времето  за полуразпад  
или стойностите  на,DT  50 и, ако е подходящо , DT  75 и DT  90 
трябва  да бъдат  включени  чрез прилагане  на подходящ  
кинетичен  модел  при изчисленията . Стойностите  на времето  за 
полуразпад  или DT  50 трябва  да бъдат  отчетени  при 
едновременно  описание  на използвания  модел , кинетиката  от 
първи  ред и определящия  коефициент  (r  2 ). Предпочита  се 
кинетиката  от първи  ред, освен  ако r 2 < 0,7. Ако е подходящо , 
изчисления  трябва  да се направят  и за основните  продукти  от 
трансформацията . Примери  на подходящи  модели  са описани  в 
препратки  от 31 до 35. 
В случай  на изпитвания , проведени  при различни  температури , 
степените  на трансформация  трябва  да бъдат  описани  като 
функция  на температурата  в експерименталния  температурен  
обхват  с използването  на Арениусовата  зависимост  по 
формулата : 
k ¼ A·е ÄB=T или lnk ¼ 1nA Ä B 
T 
където  ln А и В са регресионни  константи  на пресичане  и 
наклон , респективно , на най-добра  свързваща  линия , произ­  
хождаща  от линейната  регресия  ln k спрямо  1/T, k е скоростна  
константа  при температура  Т и Т е температура  по Келвин . 
Трябва  да бъде  обърнато  внимание  на граничния  температурен  
интервал , в който  ще бъде  валидна  Арениусовата  зависимост  
при случаите  на трансформация , управлявана  от микробната  
дейност . 
2.2. ОЦЕНЯВАНЕ  И ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Въпреки  че изпитванията  се провеждат  в изкуствена  
лабораторна  система , резултатите  ще позволят  да се оцени  
степента  на трансформация  на изпитваното  вещество , а така 
също  и степента  на образуване  и устойчивост  на продуктите  
от трансформацията  при условията  на експеримента  (36) (37).  
Проучването  на пътя  на трансформацията  осигурява  
информация  за начина , по който  чрез химични  и микробни  
реакции  приложеното  вещество  структурно  се изменя  в почвата  
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва : 
Изпитвано  вещество : 
— търговско  наименование , химично  наименование , CAS 
номер , структурна  формула  (показваща  положението  на 
етикета (ите), когато  се използва  материал  с маркиран  радио­  
активен  изотоп ) и съответните  физикохимични  свойства  (вж. 
точка  1.5);  
— степен  на чистота  (примеси ) на изпитваното  вещество ; 
— радиохимична  степен  на чистота  на маркирания  химикал  и 
специфична  активност  (където  е подходящо ). 
Вещества  за сравнение : 
— химично  наименование  и структура  на веществата  за 
сравнение , използвани  за охарактеризиране  и/или идент­  
ифициране  на продукт  от трансформацията . 
Изпитвани  почви : 
— подробности  за местата , от които  са събирани ; 
— дата и процедура  за вземане  на почвени  проби ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1301
 
— свойства  на почвите , такива  като pH, съдържание  на 
органичен  въглерод , състав  ( % пясък , % наноси , % глина ), 
способност  за катионен  обмен , насипна  плътност , способност  
за задържане  на вода  и микробна  биомаса ; 
— продължителност  на периода  на съхраняване  на почвата  и 
условия  на съхранение  (ако се съхранява ). 
Условия  на изпитването : 
— дати  на провеждане  на експериментите ; 
— приложено  количество  на изпитваното  вещество ; 
— използвани  разтворители  и метод  за апликиране  на 
изпитваното  вещество ; 
— тегло  на първоначално  третираната  почва  и на почвените  
проби  при всеки  интервал  за анализ ; 
— описание  на използваната  инкубационна  система ; 
— нива  на въздушния  поток  (само  за проточни  системи ); 
— температура  на експерименталната  постановка ; 
— съдържание  на влага  в почвата  през периода  на инкубиране ; 
— микробна  биомаса  в началото , по време  и в края  на 
аеробните  изпитвания ; 
— pH, концентрация  на кислорода  и редоксипотенциал  в 
началото , по време  и в края  на анаеробните  и изпитванията  
при наводняване ; 
— метод (и) на екстрахиране ; 
— методи  за количествено  определяне  и идентифициране  на 
изпитваното  вещество  и основните  продукти  от транс­  
формацията  в почва  и абсорбционни  материали ; 
— брой  на репликите  и брой  на контролите . 
Резултати : 
— резултати  от определянето  на микробната  активност ; 
— повторяемост  и чувствителност  на използваните  аналитични  
методи ; 
— степени  на възстановяване  ( % стойности  за валиден  
експеримент  са посочени  в точка  1.7.1);  
— таблици  с резултати , изразени  като процент  от приложената  
първоначална  доза и, където  е подходящо , като mg.kg  -l почва  
(въз основа  на сухо  тегло ); 
— масов  баланс  по време  и в края  на изпитванията ; 
— охарактеризиране  на неекстрахируемата  (граничната ) радио­  
активност  или остатъци  в почвата ; 
— количествено  определяне  на отделения  СО 2 и на други  
летливи  съединения ; 
— диаграми  на концентрациите  в почвата  спрямо  времето  за 
изпитваното  вещество  и, където  е подходящо , за основните  
продукти  от трансформацията ; 
— време  на полуразпад  или DT  50 , DT  75 и DT  90 за изпитваното  
вещество  и, където  е подходящо , за основните  продукти  от 
трансформацията , включително  доверителни  интервали ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1302
 
— оценка  на степента  на абиотично  разграждане  при стерилни  
условия ; 
— оценка  на кинетиката  на трансформацията  на изпитваното  
вещество  и, където  е подходящо , на основните  продукти  от 
трансформацията ; 
— предлагани  пътища  на трансформация , където  е подходящо ; 
— обсъждане  и интерпретиране  на резултатите ; 
— „сурови “ (необработени ) данни  (напр . хроматограми  на 
пробите , примерни  изчисления  на степените  на транс­  
формация  и използваните  средства  за идентифициране  на 
продуктите  от трансформацията . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) US Environmental Protection Agency (1982). Pesticide 
Assessment Guidelines, Subdivision N. Chemistry: Environ ­
mental Fate.  
(2) Agriculture Canada (1987). Environmental Chemistry and Fate. 
Guidelines for registration of pesticides in Canada.  
(3) European Union (EU) (1995). Commission Directive 95/36/EC 
of 14 July 1995 amending Council Directive 91/414/EEC concerning the placing of plant protection products on the 
market. Annex II, Part A and Annex III, Part A: Fate and 
Behaviour in the Environment.
 
(4) Dutch Commission for Registration of Pesticides (1995). 
Application for registration of a pesticide. Section G: Behaviour of the product and its metabolites in soil, water and air.
 
(5) BBA (1986). Richtlinie fer die amtliche Pr ъfung von Pflanzen ­
schutzmitteln, Teil IV, 4—1. Verbleib von Pflanzenschutz ­
mitteln im Boden — Abbau, Umwandlung und Metabolismus.  
(6) ISO/DIS 11266-1 (1994). Soil Quality -Guidance on laboratory 
tests for biodegradation of organic chemicals in soil — Part 1: 
Aerobic conditions.  
(7) ISO 14239 (1997). Soil Quality — Laboratory incubation 
systems for measuring the mineralization of organic chemicals in soil under aerobic conditions.
 
(8) SETAC (1995). Procedures for Assessing the Environmental 
Fate and Ecotoxicity of Pesticides. Mark R. Lynch, Ed.  
(9) MAFF — Japan 2000 — Draft Guidelines for транс formation 
studies of pesticides in soil — Aerobic metabolism study in soil under paddy field conditions (flooded).
 
(10) OECD (1995). Final Report of the OECD Workshop on 
Selection of Soils/Sediments. Belgirate, Italy, 18—20 January 
1995.  
(11) Guth, J. A. (1980). The study of транс formations. In Inte ­
ractions between Herbicides and the Soil (R. J. Hance, Ed.), 
Academic Press, 123—157.  
(12) DFG: Pesticide Bound Residues in Soil. Wiley — VCH 
(1998).  
(13) T. R. Roberts: Non-extractable pesticide residue in soils and 
plants. Pure Appl. Chem. 56, 945—956 (IUPAC 1984).  
(14) OECD Test Guideline 304 A: Inherent Biodegradability in Soil 
(adopted 12 May 1981).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1303
 
(15) ISO 10381-6 (1993). Soil Quality — Sampling — Part 6: 
Guidance on the collection, handling and storage of soil for 
the assessment of aerobic microbial processes in the laboratory.  
(16) приложение  V to Dir. 67/548/EEC.  
(17) Guth, J.A. (1981). Experimental approaches to studying the 
fate of pesticides in soil. In Progress in Pesticide Biochemistry. 
D.H. Hutson, T.R. Roberts, Eds. J. Wiley & Sons. Vol 1, 85—114.
 
(18) Soil Texture Classification (US and FAO systems): Weed 
Science, 33, Suppl. 1 (1985) and Soil Sci. Soc. Amer. Proc. 
26:305 (1962).  
(19) Methods of Soil Analysis (1986). Part 1, Physical and Mine ­
ralogical Methods. A. Klute, Ed.) Agronomy Series № 9, 2nd 
Edition.  
(20) Methods of Soil Analysis (1982). Part 2, Chemical and Micro ­
biological Properties. A. L. Page, R. H. Miller and D. R. Kelney, Eds. Agronomy Series № 9, 2nd Edition.
 
(21) ISO Standard Compendium Environment (1994). Soil Quality 
— General aspects; chemical and physical methods of analysis; biological methods of analysis. First Edition.
 
(22) Мъckenhausen, E. (1975). Die Bodenkunde und ihre geolo ­
gischen, geomorphologischen, mineralogischen und petrolo ­
gischen Grundlagen. DLG-Verlag, Frankfurt, Main.  
(23) Scheffer, F., Schachtschabel, P. (1975). Lehrbuch der Boden ­
kunde. F. Enke Verlag, Stuttgart.  
(24) Anderson, J. P. E., Domsch, K. H. (1978) A physiological 
method for the quantitative measurement of microbial biomass in soils. Soil Biol. Biochem. 10, 215—221.
 
(25) ISO 14240-1 and 2 (1997). Soil Quality — Determination of 
soil microbial biomass — Part 1: Substrate-induced respiration 
method. Part 2: fumigation-extraction method.  
(26) Anderson, J. P. E. (1987). Handling and storage of soils for 
pesticide experiments. In Pesticide Effects on Soil Microflora. 
L. Somerville, M. P. Greaves, Eds. Taylor & Francis, 45-60.  
(27) Kato, Yasuhiro. (1998). Mechanism of pesticide транс for­
mation in the environment: Aerobic and bi отранс formation 
of pesticides in aqueous environment. Proceedings of the 
16th Symposium on Environmental Science of Pesticide, 105—120.
 
(28) Keuken O., Anderson J. P. E. (1996). Influence of storage on 
biochemical processes in soil. In Pesticides, Soil Microbiology 
and Soil Quality, 59—63 (SETAC-Europe).  
(29) Stenberg B., Johansson M., Pell M., Ѕјцdahl-Svensson K., 
Stenstrцm J., Torstensson L. (1996). Effect of freeze and 
cold storage of soil on microbial activities and biomass. In 
Pesticides, Soil Microbiology and Soil Quality, 68—69 (SETAC-Europe).
 
(30) Gennari, M., Negre, M., Ambrosoli, R. (1987). Effects of 
ethylene oxide on soil microbial content and some chemical 
characteristics. Plant and Soil 102, 197—200.  
(31) Anderson, J. P. E. (1975). Einfluss von Temperatur und 
Feuchte auf Verdampfung, Abbau und Festlegung von 
Diallat im Boden. Z. PflKrankh Pflschutz, Sonderheft VII, 
141—146.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1304
 
(32) Hamaker, J. W. (1976). The application of mathematical 
modelling to the soil persistence and accumulation of pesti ­
cides. Proc. BCPC Symposium: Persistence of Insecticides and Herbicides, 181—199.
 
(33) Goring, C. A. I., Laskowski, D. A., Hamaker, J. W., Meikle, 
R. W. (1975). Principles of pesticide degradation in soil. In 
„Environmental Dynamics of Pesticides“. R. Haque and V. H. 
Freed, Eds., 135—172.  
(34) Timme, G., Frehse, H., Laska, V. (1986). Statistical interpre ­
tation and graphic representation of the degradational behaviour of pesticide residues. II. Pflanzenschutz — Nach ­
richten Bayer 39, 188—204.
 
(35) Timme, G., Frehse, H. (1980). Statistical interpretation and 
graphic representation of the degradational behaviour of pesticide residues. I. Pflanzenschutz — Nachrichten Bayer 
33, 47—60.
 
(36) Gustafson D.I., Holden L.R. (1990). Non-linear pesticide dissi ­
pation in soil; a new model based on spatial variability. Environm. Sci. Technol. 24, 1032—1041.
 
(37) Hurle K., Walker A. (1980). Persistence and its prediction. In 
Interactions between Herbicides and the Soil (R.J. Hance, Ed.), 
Academic Press, 83—122.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1305
 
Приложение  1 
ВОДНО  НАЛЯГАНЕ , ПОВЪРХНОСТЕН  КАПАЦИТЕТ  (FC) И СПОСОБНОСТ  ЗА 
ЗАДЪРЖАНЕ  НА ВОДА  (WHC)  ( 1 ) 
Височина  на водния  стълб  
[cm] pF (  а ) bar (  b ) Забележки  
10 7 7 10  4 Суха  почва  
1,6 . 10  4 4,2 16 Точка  на сушене  
10 4 4 10 
10 3 3 1 
6.10  2 2,8 0,6 
3,3 . 10  2 2,5 0,33 (  c ) 
Обхват  на 
повърхностния  капацитет  ( d ) 10 2 2 0,1 
60 1,8 0,06 33 1,5 0,033 10 1 0,01 WHC ( приближение ) 
1 0 0,001 Водооросявана  почва
 
( а ) pF = log на cm воден  стълб . 
( b ) 1 bar = 10  5 Pa. 
( c ) Съответства  на приблизително  водно  съдържание  от 10 % в пясък , 35 % в почва  и 45 % в глина . 
( d ) Повърхностният  капацитет  не е константа , а варира  с различните  типове  почва  между  pF 1,5 и 2,5. 
Водното  налягане  се измерва  в cm воден  стълб  или в bar. Във връзка  с по-големия  обхват  на 
налягането  на всмукване  то се изразява  просто  като стойност  на pF, която  е еквивалентна  на 
логаритъма  от cm на водния  стълб . 
Повърхностният  капацитет  (FC) се определя  като количеството  вода , което  може  да бъде  
запазено  2 дни след  по-дълъг  дъждовен  период  или достатъчно  напояване , спрямо  прит­  
еглянето  от естествената  почва  (в природата ). Той се определя  за необработена  почва  in 
situ на повърхността . Измерването  е неприложимо  за обработени  лабораторно  почвени  
проби . Стойностите  на FC, определени  при обработени  почви , могат  да покажат  големи  
систематични  отклонения . 
Способността  за задържане  на вода  (WHC) се определя  в лабораторни  условия  с 
необработени  и обработени  почви  чрез насищане  на почвата  в колоната  с вода , пренасяна  
по капилярен  път. Тя е особено  важна  при обработени  почви  и може  да бъде  до 30 % по- 
голяма  от повърхностния  капацитет  (1). А така също  експериментално  по-лесно  е да се 
определят  такива  достоверни  стойности  на FC.  
( 1 ) Mückenhausen, E. (1975). Die Bodenkunde und ihre geologischen, geomorphologischen, mineralogischen und 
petrologischen Grundlagen. DLG-Verlag, Frankfurt, Main.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1306
 
Приложение  2 
СЪДЪРЖАНИЕ  НА ВЛАГА  В ПОЧВАТА  (g вода  за 100 g суха  почва ) ПРИ  
РАЗЛИЧНИТЕ  ВИДОВЕ  ПОЧВА  ОТ РАЗЛИЧНИ  СТРАНИ  
Съдържание  на влага  в почвата  
Тип почва  Страна  
WHC (  1 ) pF = 1,8 pF = 2,5  
Пясък  Германия  28,7 8,8 3,9 
Глинест  пясък  Германия  50,4 17,9 12,1 
Глинест  пясък  Швейцария  44,0 35,3 9,2 
Наносна  почва  Швейцария  72,8 56,6 28,4 
Глинеста  почва  Бразилия  69,7 38,4 27,3 
Глинеста  почва  Япония  74,4 57,8 31,4 
Пясъчна  почва  Япония  82,4 59,2 36,0 
Наносна  почва  САЩ  47,2 33,2 18,8 
Пясъчна  почва  САЩ  40,4 25,2 13,3  
( 1 ) Способност  за задържане  на вода . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1307
 
Приложение  3 
Фигура  1 
Пример  за проточна  апаратура  за изследване  на трансформацията  на химикали  в 
почва  ( 1 ) ( 2 )
 
Фигура  2 
Пример  за биометричен  вид колба  за изследване  на трансформацията  на химикали  в 
почва  ( 3 )
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1308  
( 1 ) Guth, J.A. (1980). The study of transformations. In Interactions between Herbicides and the Soil (R. J. Hance, 
Ed.), Academic Press, 123—157. 
( 2 ) Guth, J. A. (1981). Experimental approaches to studying the fate of pesticides in soil. In Progress in Pesticide 
Biochemistry. D. H. Hutson, T. R. Roberts, Eds. J. Wiley & Sons. Vol 1,85—114. 
( 3 ) Anderson, J. P. E. (1975). Einfluss von Temperatur und Feuchte auf Verdampfung, Abbau und Festlegung 
von Diallat im Boden. Z. PflKrankh Pflschutz, Sonderheft VII, 141—146.
 B.24.  АЕРОБНА  И АНАЕРОБНА  ТРАНСФОРМАЦИЯ  ВЪВ  
ВОДНИ  СЕДИМЕНТНИ  СИСТЕМИ  
1. ME ТОД  
Този  метод  е идентичен  с ОECD TG 308 (2002).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Химикалите  могат  да попаднат  в плитчините  или дълбоко  под 
водната  повърхност  по такива  пътища  на постъпване , като 
директно  прилагане , впръскване , изливане , дренаж , депониране  
на отпадъци , промишлени , битови  или земеделски  отпадъчни  
води  и атмосферно  отлагане . Този  метод  за изпитване  описва  
лабораторен  метод  за оценка  на аеробната  и анаеробната  транс­  
формация  на органични  химикали  във водни  седиментни  
системи . Той се основава  на съществуващите  ръководства  (1) 
(2) (3) (4) (5) (6). Семинарът  на ОИСР  за избор  на почви  и 
седименти , проведен  в Belgirate, Италия , през 1995 г. (7), 
приема  конкретно  броя  и вида  на седиментите , използвани  при 
това изпитване . Той също  дава препоръки , свързани  със 
събирането , обработването  и съхранението  на седиментните  
проби , основани  на Ръководството  на ISO (8). Такива  
изпитвания  се изисква  да бъдат  проведени  за химикали , които  
директно  се прилагат  във водата  или които  има вероятност  да 
достигнат  водната  среда  по някой  от описаните  по-горе пътища . 
Често  условията  в естествената  водна  седиментна  система  са 
аеробни  в по-горната  водна  фаза . Повърхностният  слой  на 
седимента  може  да бъде  или аеробен , или анаеробен , докато  
по-дълбокият  седимент  обикновено  е анаеробен . За да се 
обхванат  всички  тези възможности , в този метод  са описани  и 
аеробни , и анаеробни  изпитвания . Аеробното  изпитване  
симулира  аеробна  водна  колона  над аеробен  седиментен  слой , 
който  е с анаеробен  градиент . Анаеробното  изпитване  симулира  
затворена  анаеробна  водноседиментна  система . Ако обстоят­  
елствата  показват , че е необходимо  значително  отклонение  от 
тези препоръки , например  поради  използване  на цели  седименти  
или седименти , които  могат  да бъдат  експозирани  с изпитваното  
вещество , за целта  се използват  други  налични  методи  (9). 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
При всички  случаи  трябва  да бъдат  използвани  международните  
стандартни  единици  (SI).  
Изпитвано  вещество : всяко  вещество , независимо  от това дали  
е изходно  съединение  или съответен  продукт  от транс­  
формацията . 
Продукти  от трансформацията : всички  вещества , получени  в 
резултат  на реакциите  при биотични  и абиотични  транс­  
формации  на изпитваното  вещество , включително  СО 2 и 
крайните  остатъци . 
Крайни  остатъци : представляват  съединения  в почвата , 
растенията  или животните , които  остават  в матрицата  под 
формата  на изходно  вещество  или негов (и) метаболит (и) след  
екстракциите . Методът  за екстрахиране  не трябва  съществено  
да изменя  самите  съединения  или структурата  на матрицата . 
Би могло  донякъде  да се изясни  природата  на връзката  чрез 
прилагане  на екстракционни  методи  с промяна  на матрицата  и 
на сложни  аналитични  техники . Например  по този начин  се 
идентифицират  ковалентни  йонни  и сорбционни  връзки , а така 
също  и включванията  (примеси ). Най-общо  образуването  на 
крайни  остатъци  намалява  значително  биологичния  достъп  и 
биологичната  наличност  (10) [изменено  от IUРАС  1984(11)].  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1309
 
Аеробна  трансформация : (окисление ): реакциите  протичат  в 
присъствието  на молекулен  кислород  (12).  
Анаеробна  трансформация : (редукция ) реакциите  протичат  в 
отсъствието  на молекулен  кислород  (12).  
Природни  води : са повърхностните  води  от езера , реки , потоци  
и др. 
Седимент : е смес  от минерални  и органични  химични  
инградиенти , които  съдържат  съединения  с високо  съдържание  
на въглерод  и азот в тях и са с високи  молекулни  маси . Той се 
отлага  от природните  води  и формира  граница  с тях. 
Минерализация : е пълното  разграждане  на органично  
съединение  до СО 2 и Н 2 О при аеробни  условия  и до СН 4 , 
СО 2 и Н 2 О при анаеробни  условия . В контекста  на този метод  
за изпитване , когато  се използва  съединение  с маркиран  радио­  
активен  изотоп , минерализация  означава  пълното  разграждане  
на молекулата , по време  на което  маркиран  въглероден  атом  
се окислява  или редуцира  количествено , вследствие  на което  
се отделя  съответното  количество  14 СО 2 или съответно  14 СН 4 . 
Време  на полуразпад : t 0,5 е времето , при което  е достигната  
50 % трансформация  на изпитвано  вещество , когато  транс­  
формацията  може  да бъде  описана  чрез кинетика  от първи  
клас; то не зависи  от началната  концентрация . 
DT 50 (време  на изчезване  50):  е времето , за което  началната  
концентрация  на изпитваното  вещество  намалява  с 50 %;  
DT 75 (време  на изчезване  75):  е времето , за което  началната  
концентрация  на изпитваното  вещество  намалява  със 75 %.  
DT 90 (време  на изчезване  90):  е времето , за което  началната  
концентрация  на изпитваното  вещество  намалява  с 90 %.  
1.3. ВЕЩЕСТВА  ЗА СРАВНЕНИЕ  
За количествено  определяне  и идентифициране  на продуктите  от 
трансформацията  трябва  да бъдат  използвани  вещества  за 
сравнение  в съответните  спектроскопски  и хроматографски  
методи . 
1.4. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
За измерване  на степента  на трансформация  могат  да бъдат  
използвани  немаркирани  изпитвани  вещества  или такива  с 
маркирани  изотопи , въпреки  че се предпочита  маркиран  
материал . Необходимо  е използването  на маркиран  материал  
за проследяване  на пътя  на трансформация  и за установяване  
на масовия  баланс . Препоръчва  се маркиране  14 С, но употребата  
на други  изотопи , такива  като  13 С, 15 N, 3 Н, 32 Р, също  може  да 
бъде  от полза . Доколкото  е възможно , етикетът  трябва  да бъде  
поставен  върху  най-стабилната (ите) част(и) на молекулата  ( 1 ). 
Изпитваното  вещество  трябва  да бъде  с химична  и/или радиох­  
имична  степен  на чистота  минимум  95 %.  
Преди  провеждане  на изпитване  трябва  да бъде  осигурена  
следната  информация  за изпитваното  вещество : 
а) разтворимост  във вода  (метод  А.6) 
б) разтворимост  в органични  разтворители ; 
в) парно  налягане  (метод  А.4) и константата  на Хенри ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1310  
( 1 ) Например  ако веществото  съдържа  един  пръстен , се изисква  маркиране  на този 
пръстен ; ако изпитваното  вещество  съдържа  два или повече  пръстена , за оценяване  
на „жизнения  цикъл “ на всеки  маркиран  пръстен  може  да бъде  необходимо  
провеждане  на отделни  изпитвания , за да се получи  подходяща  информация  за 
образуването  на продуктите  от трансформацията .
 г) коефициент  на съотношението  n-октанол /вода  (метод  А.8); 
д) адсорбционен  коефициент  (K  d , K  f или K  ос , където  е 
възможно ) (метод  В.18); 
е) хидролиза  (метод  В.7); 
ж) дисоциационна  константа  (рK а ) [Насоки  на ОИСР  112] (13);  
з) химична  структура  на изпитваното  вещество  и положение  на 
етикетирания (те) изотоп (и), ако има. 
Забележка : Трябва  да бъде  отчетена  температурата , при която  
са направени  тези измервания . 
Друга  полезна  информация  може  да включва  данни  за токсич­  
ността  на изпитваното  вещество  към микроорганизмите , данни  
за действителната  и/или наследствената  способност  за 
биоразграждане  и данни  за аеробната  и анаеробната  транс­  
формация  в почвата . 
Трябва  да има налични  аналитични  методи  (включително  
методи  за екстракция  и почистване ) за количествено  определяне  
и идентифициране  на изпитваното  вещество  и неговите  
продукти  от трансформацията  във вода  и в седимент  (вж. 
точка  1.7.2).  
1.5. ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Методът , описан  в настоящото  изпитване , използва  аеробна  и 
анаеробна  водна  седиментна  система  (вж. приложение  1), 
която  позволява : 
i) измерването  на нивото  на трансформация  на изпитваното  
вещество  във водноседиментна  система , 
ii) измерването  на нивото  на трансформация  на изпитваното  
вещество  в седимента , 
iii) измерването  на степента  на минерализация  на изпитваното  
вещество  и/или неговите  продукти  от трансформацията  
(когато  се използва  изпитвано  вещество , маркирано  с 14 С), 
iv) идентифициране  и количествено  определяне  на продуктите  
от трансформацията  във водната  и седиментната  фаза , в това 
число  масов  баланс  (когато  се използва  маркирано  
вещество ), 
v) измерването  на разпределението  на изпитваното  вещество  и 
неговите  продукти  от трансформацията  между  двете  фази  
през периода  на инкубиране  на тъмно  (да се избягват , 
например , цветове  от морски  водорасли ) при постоянна  
температура . Стойностите  на времената  на полуразпадите , 
DT 50 , DT  75 и DT  90 ce определят , когато  данните  се 
потвърждават , но не трябва  да бъдат  екстраполирани  дълго  
след  експерименталния  период  (вж. точка  1.2).  
Най-малко  два седимента  и свързаните  с тях води  са необходими  за 
аеробните  и респективно  за анаеробните  изпитвания  (7). Въпреки  
това може  да има случаи , при които  да бъдат  използвани  повече  от 
два водни  седимента , например  при химикал , който  може  да 
присъства  в сладководни  води  и/или в морска  среда . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1311
 
1.6. ПРИЛОЖИМОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Този  метод  е общоприложим  за химичните  вещества  (немаркирани  
или маркирани ), за които  има аналитичен  метод  с достатъчна  
точност  и чувствителност . Той е приложим  за слаболетливи , 
нелетливи , водоразтворими  или слаборазтворими  във вода  
съединения . Изпитването  не трябва  да бъде  прилагано  за 
химикали , които  при контакт  с вода  стават  силно  летливи  (напр . 
опушващи  средства , органични  разтворители ) и поради  това не 
биха  могли  до бъдат  запазени  във водата  и/или седимента  при 
експерименталните  условия  на настоящото  изпитване . 
Методът  се прилага  и за проучване  на трансформацията  на 
химикалите  в сладководни  води  и седименти , но по принцип  
също  може  да бъде  приложен  за естуарни /морски  системи . 
Той не е подходящ  за симулиране  условията  в течащи  води  
(напр . реки ) или открито  море . 
1.7. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
1.7.1.  Възстановяване  
Екстрахиране  и анализиране  на най-малко  две водни  и седиментни  
проби  веднага  след добавяне  на изпитваното  вещество  дават  първон­  
ачална  индикация  за повторяемостта  на аналитичния  метод  и за 
еднаквото  прилагане  на апликационната  процедура  при изпитваното  
вещество . Възстановяванията  на по-късните  етапи  на експеримента  
се представят  чрез съответните  масови  баланси  (когато  се използва  
маркиран  материал ). Възстановяванията  трябва  да бъдат  в обхвата  от 
90 % до 110 % за маркирани  химикали  (6) и от 70 % до 110 % за 
немаркирани  химикали . 
1.7.2.  Повторяемост  и чувствителност  на аналитичния  метод  
Повторяемостта  на аналитичния  метод  (с изключение  на първонач­  
алната  екстракционна  ефективност ) за количествено  определяне  на 
изпитваното  вещество  и продуктите  от трансформацията  може  да 
бъде  проверена  чрез дублиращи  се анализи  на едни  и същи  водни  
или седиментни  проби , които  са били  инкубирани  достатъчно  
дълго  време , за да се образуват  продуктите  от трансформацията . 
Границата  на аналитичния  метод  за откриване  (LOD) на 
изпитваното  вещество  и на продуктите  от трансформацията  
трябва  да бъде  поне  0,01 mg.kg  -l във вода  или в седимент  
(като изпитвано  вещество ) или 1 % от началното  количество , 
приложено  на системата  за изпитване ; разглежда  се стойността , 
която  е по ниска . Трябва  да бъде  определена  също  и границата  
за количествено  определяне  на метода  (LOQ).  
1.7.3.  Прецизност  на данните  от трансформацията  
Регресионният  анализ  на концентрациите  на изпитваното  
вещество  като функция  от времето  дава подходяща  информация  
за надеждността  (прецизността ) на кривата  на трансформация  и 
позволява  да се изчислят  доверителните  интервали  на полуразпада  
(ако се прилага  псевдокинетика  от първи  клас или стойностите  на 
DT 50 и, ако е подходящо , стойностите  на DT  75 и DT  90 . 
1.8. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.8.1.  Система  и апаратура  за изпитването  
Изпитването  трябва  да бъде  провеждано  в стъклени  контейнери  
(напр . бутилки , центрофужни  епруветки ), освен  ако 
предварително  известната  информация  (такава  като коефициента  
на съотношението  n-октанол -вода , сорбционните  данни  и др.) 
показва , че изпитваното  вещество  може  да се прилепи  към 
стъклото , като в този случай  трябва  да се помисли  за използване  
на алтернативен  материал  (като тефлон ). Когато  е известно , че 
изпитваното  вещество  прилепва  към стъклото , може  да е 
възможно  за разрешаването  на този проблем  да се използват  
един  или повече  от следните  методи : ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1312
 
— определяне  на сорбираната  от стъклото  маса  на изпитваното  
вещество  и продуктите  от трансформацията ; 
— осигуряване  на разтворител  за почистване  на цялата  
стъклария  в края  на експеримента ; 
— използване  на образуваните  продукти  (вж. също  точка  1.9.2);  
— използване  на по-голямо  количество  съразтворител  за 
добавяне  на изпитвано  вещество  към системата ; ако се 
използва  съразтворител , той не трябва  да солволизира  
изпитваното  вещество . 
Примери  за типичната  апаратура  за изпитване , т.е. газопроточна  
и биометричен  тип системи , са представени  съответно  в прил­  
ожения  2 и 3 (14). Други  инкулационни  системи , които  биха  
били  от полза , са описани  в позоваване  15. Дизайнът  на 
експерименталната  апаратура  трябва  да позволява  обмена  на 
въздух  или азот и улавянето  на летливите  продукти . Размерите  
на апаратурата  трябва  да бъдат  такива , че да отговарят  на изис­  
кванията  на изпитването  (вж. точка  1.9.1). Вентилацията  може  
да бъде  осигурена  или чрез лек барботаж  (леко  кипене ), или 
чрез продухване  с въздух  или азот над водната  повърхност . В 
друг  случай  леко  разбъркване  на водата  може  да бъде  
препоръчано  за по-добро  разпределение  на кислорода  или 
азота  във водата . Свободният  от СО 2 въздух  не трябва  да се 
използва , тъй като той може  да причини  като резултат  
нарастване  на pH на водата . От друга  страна , трябва  да бъде  
избягвано  въздействието  върху  седимента , доколкото  е 
възможно . Слабо  летливите  химикали  трябва  също  да бъдат  
изпитвани  в биометричен  тип система  с леко  разбъркване  на 
водната  повърхност . Може  да се използват  също  затворени  
съдове , пространството  в горната  част на които  е заето  от 
атмосферен  въздух  или азот и от вътрешни  ампули  за улавяне  
на летливи  продукти  (16). При аеробно  изпитване  се изисква  
редовен  обмен  на газа в горното  пространство , за да се 
компенсира  консумацията  на кислород  от биомасата . 
Подходящи  уловители  за събиране  на летливите  продукти  от 
трансформацията  включват , без да се ограничават  до 1 mol.dm  -3 , 
разтвори  на калиев  хидроксид  или натриев  хидроксид  за 
въглероден  диоксид  ( 1 ) и етилен  гликол , етаноламин  или 2 % 
парафин  в ксилен  за органични  съединения . Летливите  
съединения , образувани  при анаеробни  условия , като метан , 
могат  да бъдат  събрани , например  чрез молекулни  отсявания . 
Такива  летливи  съединения  могат  да бъдат  изгаряни , например  
до СО 2 , чрез преминаване  на газа през кварцова  тръба , 
напълнена  с CuO при температура  900  o С и улавяне  на 
образувания  СО 2 в абсорбер  с алкали  (17).  
Изисква  се използването  на лабораторен  инструментариум  за 
химичните  анализи  на изпитваното  вещество  (напр . газотечна  
хроматография  (GLC), високоефективна  течна  хроматография  
(HPLC), тънкослойна  хроматография  (TLC), масспектрометрия  
(MS), газ-хроматография -масспектрометрия  (GC-MS), течна  
хроматография -масспектрометрия  (LC-MS), ядрено -магнитен  
резонанс  (NMR) и други ), включително  системи  за откриване  
на химикали  с маркиран  радиоактивен  изотоп  и немаркирани  
химикали , ако е подходящо . Когато  се използва  материал  с 
маркиран  радиоактивен  изотоп , се изисква  да има също  течен  
сцинтилационен  брояч  (детектор ) и окислител  за горенето  (за 
изгарянето  на седиментни  проби  преди  анализиране  за радио­  
активност ). 
Изисква  се и друго  подходящо  стандартно  лабораторно  
оборудване , стъклария , химикали  и реагенти  за физикохимични  
и биологични  определяния  (вж. таблица  1, точка  1.8.2.2).  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1313  
( 1 ) Тъй като тези алкални  абсорбционни  разтвори  също  абсорбират  въглероден  
диоксид  от вентилиралия  въздух  и правят  това чрез респирация  при аеробни  
експерименти , на равни  интервали  от време  те трябва  да бъдат  сменяни , за да се 
избегне  тяхното  насищане  и поради  това да се загуби  тяхната  абсорбционна  
способност .
 1.8.2.  Избор  и брой  на водните  седименти  
Местата  за вземане  на проби  трябва  да бъдат  избрани  в съотв­  
етствие  с целта  на изпитването  за всяка  ситуация . За избраните  
места  за вземане  на проби  трябва  да бъде  обстойно  разгледана  
историята  на възможните  земеделски , промишлени  или битови  
влияния  (намеси ) и на насрещните  води  (водите  срещу  
течението ). Седиментите  не трябва  да бъдат  използвани , ако са 
замърсени  с изпитваното  вещество  или негови  структурни  
аналози  през предходните  4 години . 
1.8.2.1.  Избор  на седимент  
Обикновено  за аеробни  изпитвания  се използват  два 
седимента  (7). Двата  избрани  седимента  трябва  да се различават  
по съдържание  на органичен  въглерод  и структура . Единият  
седимент  трябва  да има високо  съдържание  на органичен  
въглерод  (2,5—7,5 %) и дребнозърнеста  (фина ) структура , а 
другият  седимент  трябва  да има ниско  съдържание  на 
органичен  въглерод  (0,5—2,5 %) и едрозърнеста  структура . 
Обикновено  разликата  в съдържанието  на органичен  въглерод  
в седиментите  трябва  да бъде  поне  2 %. „ Дребнозърнеста  
(фина ) структура “ се дефинира  като съдържание  на 
[глина  + нанос ] ( 1 ) > 50 %, а „едрозърнеста  структура “ се 
дефинира  като съдържание  на [глина  + нанос ] < 50 %. 
Разликата  в съдържанието  на [глина  + нанос ] при двата  
седимента  обикновено  трябва  да бъде  поне  20 %. В случаите , 
при които  химикал  може  да бъде  открит  също  в морски  води , 
поне  една  от водноседиментните  системи  трябва  да бъде  от 
морски  произход . 
За стриктното  провеждане  на анаеробно  изпитване  трябва  да 
бъдат  взети  като проби  два седимента  (включително  
асоциираните  им води ) от анаеробните  зони  на повърхностен  
водоизточник  (7). И седиментната , и водната  фаза  трябва  вним­  
ателно  да бъдат  обработвани  и транспортирани  в отсъствие  на 
кислород . 
Може  да има други  параметри , които  да са важни  при избора  на 
седименти , като те се разглеждат  за всеки  отделен  случай . 
Например  pH обхватът  на седиментите  е важен  за изпитвани  
химикали , за които  трансформацията  и/или сорбцията  могат  да 
бъдат  зависими  от pH. Върху  pH зависимостта  на сорбцията  
може  да се въздейства  чрез рK а на изпитваното  вещество . 
1.8.2.2.  Охарактеризиране  на водноседиментните  проби  
Ключовите  параметри , които  трябва  да бъдат  измерени  и 
отчетени  (с препратка  към избрания  метод ) и при водата , и 
при седимента , и етапът  от изпитването , при който  тези 
параметри  са били  определени , се резюмират  в таблицата  по- 
долу . За информация , в препратки  (18) (19) (20) (21) са 
представени  методи  за определяне  на тези параметри . 
В допълнение , може  да е необходимо  да бъдат  измерени  и 
отчетени  други  параметри , определяни  за всеки  отделен  случай  
(напр . за сладки  води : частици , алкалност , твърдост , провод­  
имост , NO  3 /PO  4 (съотношение  и индивидуални  стойности ); за 
седименти : способност  за катионен  обмен , способност  за 
задържане  на вода , карбонат , общи  азот и фосфор ; и за 
морски  системи : соленост . Анализиране  на седиментите  и 
водите  за нитрати , сулфонати , бионалично  (биологично  годно ) 
желязо  и други  възможни  електронни  аксептори  също  може  да 
бъде  от полза  при оценяването  на окислително -редукционните  
условия , особено  във връзка  с анаеробната  трансформация . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1314  
( 1 ) [Глина  + нанос ] е минералната  фракция  на седимента  с размер  на частиците  
< 50 μm.
 Измервания  на параметрите  за охарактеризиране  на водноседиментните  проби  (7)(22)(23)  
Параметър  Етап  от процедурата  за изпитване  
място  за 
вземане  на 
пробите  последваща  
обработка  начало  на 
аклиматиз­  
ацията  начало  на 
изпитванет­  
о по време  на 
изпитванет­  
о край  на 
изпитванет­  
о 
Вода  
Произход /източник  X 
Температура  X 
pH X X X X X TOC X X X 
Концентрация  на 0
 2 * X X X X X 
Редоксипотенциал * X X X X  
Седимент  
Произход /източник  X 
Дебелина  на слоя  X 
pH X X X X X Разпределение  на частиците  
по размер  X 
TOC X X X X 
Микробна  биомаса  (*) X X X 
Редоксипотенциал  (**) Наблю­  
дения  
(цвят / 
мирис ) X X X X
 
(*) Метод  на микробиалното  респираторно  ниво  (26), метод  за опушване  (27) или измервания  чрез преброяване  
върху  плочка  (напр . бактерии , актиномицети , фунги  и общо  колонии ) при аеробни  изпитвания ; степен  на 
метаногенеза  при анаеробни  изпитвания . 
(**) Последните  резултати  от научните  изследвания  показват , че измерванията  на концентрациите  на кислорода  
във вода  и на редоксипотенциалите  не са нито  механистични , нито  предвидими  стойности , доколкото  зависят  
от растежа  и развитието  на микробните  популации  в повърхностните  води  (24) (25). Определянето  на 
биохимичната  потребност  от кислород  (BOD, при вземането  на повърхностни  проби , в началото  и края  на 
изпитването ) и на концентрациите  на микро /макрохрани  Са, Mg и Мn (в началото  и края  на изпитването ) във 
води  и измерванията  на общия  N и общия  Р в седименти  (при вземането  на повърхностни  проби  и в края  на 
изпитването ) могат  да бъдат  по-добри  инструменти  за интерпретиране  и оценка  на нивата  и пътищата  на 
аеробна  биотрансформация . 
1.8.3.  Събиране , обработване  и съхранение  
1.8.3.1.  Събиране  
При вземането  на проби  от седимент  трябва  да бъде  използвано  
Проекторъководството  на ISO за вземане  на проби  от основата  
на седимента  (8). Седиментните  проби  трябва  да бъдат  взети  от 
целия  по-горен  слой  на седимента  на дълбочина  от 5 до 10 cm. 
Асоциираната  с него  вода  трябва  да бъде  събрана  от същото  
място  или местоположение  и по същото  време , както  при 
седимента . За анаеробно  изпитване  пробите  от седимент  и 
асоциирана  вода  трябва  да бъдат  взети  и транспортирани  в 
отсъствие  на кислород  (28) (вж. точка  1.8.2.1). В позовавания  
(8) (23) са описани  някои  устройства  за вземане  на проби . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1315
 
1.8.3.2.  Обработване  
Седиментът  се отделя  от водата  чрез филтруване  и във влажен  
вид се пресява  през 2 mm сито  чрез използване  на допълнително  
добавена  вода , която  след  това се отделя . Тогава  определените  
количества  седименти  и вода  се смесват  в желаното  съот­  
ношение  (вж. точка  1.9.1) в инкубационните  колби  и се 
подготвят  за аклиматизационния  период  (вж. точка  1.8.4). За 
анаеробно  изпитване  всички  етапи  на обработване  трябва  да 
бъдат  провеждани  в отсъствие  на кислород  (29) (30) (31) (32) 
(33).  
1.8.3.3.  Съхранение  
Силно  се препоръчва  употребата  на пресни  проби  седимент  и 
вода , но ако е необходимо  съхранение , седиментът  и водата  
трябва  да бъдат  пресети , както  е описано  по-нагоре , и 
съхранявани  заедно  (6 — 10 cm воден  слой ), на тъмно , при 4 
± 2  o С в продължение  на максимум  4 седмици  (7) (8) (23). 
Пробите , които  ще бъдат  използвани  за аеробни  изпитвания , 
трябва  да бъдат  съхранявани  при свободен  достъп  на въздух  
(напр . в отворени  контейнери ), докато  тези за анаеробно  
изпитване  – в отсъствие  на кислород . Не трябва  да се допуска  
замръзване  на седимента  и водата  и изсъхване  на седимента  по 
време  на транспортирането  и съхранението . 
1.8.4.  Подготовка  на седиментните /водните  проби  за изпитването  
Подготовката  трябва  да премине  през период  на аклиматизация , 
преди  да се добави  изпитваното  вещество  към всяка  
седиментна /водна  проба , която  е била  поставена  в инкубационен  
съд, да бъде  използвана  в основното  изпитване  и аклиматиз­  
ацията  да бъде  проведена  при точно  спазване  на същите  
условия , както  при инкубирането  за изпитването  (вж. точка  
1.9.1). Аклиматизационният  период  е времето , необходимо  за 
достигане  на приемлива  стабилност  на системата , което  се 
отразява  на pH, концентрацията  на кислород  във водата , редо­  
ксипотенциалите  на седимента  и водата  и макроскопското  
разделяне  на фазите . Периодът  за аклиматизация  обикновено  
трябва  да продължи  между  една  и две седмици  и не трябва  да 
превишава  четири  седмици . Резултатите  от направените  през 
този период  определяния  трябва  да бъдат  отчетени . 
1.9. ПРОВЕЖДАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
1.9.1.  Условия  на изпитването  
Изпитването  трябва  да се провежда  в инкубационна  апаратура  
(вж. точка  1.8.1) при обемно  съотношение  вода -седимент  между  
3:1 и 4:1, и седиментен  слой  2,5 cm (± 0,5 cm) (  1 ). Препоръчва  се 
минималното  количество  на седимента  да е 50 g (сухо  тегло ) за 
инкубационен  съд. 
Изпитването  трябва  да се провежда  на тъмно , при постоянна  
температура , в обхвата  от 10 до 30  o С. Подходящата  
температура  е (20 ± 2)  o С. Когато  е подходящо , при отделни  
случаи  може  да бъде  приложена  допълнителна  по-ниска  
температура  (напр . 10  o С), в зависимост  от информацията , 
която  следва  да бъде  осигурена  от изпитването . Инкубационната  
температура  трябва  да бъде  наблюдавана  и отчитана . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1316  
( 1 ) Последните  изследвания  показват , че съхранението  при 4 o С може  да доведе  до 
намаляване  на съдържанието  на органичен  въглерод  в седимента , което  има 
вероятност  да доведе  до понижаване  на микробната  активност  (34).
 1.9.2.  Обработване  и прилагате  на изпитваното  вещество  
Използва  се една  концентрация  за изпитване  на химикала  ( 1 ). При 
препаратите  за защита  на зърнените  култури  химикалите  се 
прилагат  директно  чрез напоителните  съоръжения , като се вземе  
предвид  максималната  доза, указана  на етикета  като максимално  
апликационно  ниво , което  е изчислено  въз основа  на повърхността  
(площта ) на водата  в съда  за изпитване . При всички  други  случаи  
използваната  концентрация  трябва  да се базира  на предп­  
оложенията  за емисиите  в околната  среда . Трябва  да се обърне  
внимание  на осигуряването  на подходящата  концентрация  на 
изпитваното  вещество , която  ще се приложи  за охарактеризиране  
на пътя  на трансформацията , и образуването  и намаляването  на 
продуктите  от трансформацията . Може  да се наложи  да се 
приложат  по-високи  дози  (напр . 10 пъти ) в ситуации , при които  
концентрациите  на изпитваното  вещество  са близки  до границите  
на откриване  в началото  на експеримента  и/или основните  
продукти  от трансформацията  не могат  лесно  да бъдат  открити , 
при наличие  на 10 % апликационно  ниво  на изпитваното  
вещество . Въпреки  това, ако се използват  по-високи  конце­  
нтрации , те не трябва  да оказват  значително  вредно  въздействие  
върху  микробната  активност  на водноседиментната  система . За да 
се постигне  постоянна  концентрация  на изпитваното  вещество  в 
съдове  с различни  размери , може  да бъде  представено  съответното  
уточнение  за количеството  приложен  материал  въз основа  на 
дълбочината  на водната  колона  в съда , във връзка  с дълбочината  
на водата  на повърхността  (която  се приема , че е 100 cm, но могат  
да се използват  и други  дълбочини ). Вж. приложение  4 за 
примерно  изчисление . 
В идеалния  случай  изпитваното  вещество  трябва  да бъде  
приложено  като воден  разтвор  във водната  фаза  на изпитваната  
система . Ако е невъзможно  да се избегне , се приема  употребата  
в малки  количества  на водосмесими  разтворители  (такива , като 
ацетон , етанол ) за апликиране  и разпределение  на изпитваното  
вещество , но те трябва  да не надвишават  1 % об/об и не трябва  
да оказват  вредно  въздействие  върху  микробната  активност  на 
изпитваната  система . Трябва  да се внимава  при приготвянето  на 
водните  разтвори  на изпитваното  вещество , за да се осигури  
пълно  хомогенизиране , може  да бъде  подходящо  използването  
на генериращи  колони  и предварително  смесване . При следващо  
добавяне  на водния  разтвор  в изпитваната  система  се 
препоръчва  леко  смесване  на водната  фаза , което , доколкото  е 
възможно , да не засегне  седимента . 
Обикновено  не се препоръчва  употребата  на образуваните  
продукти , тъй като образуваните  съставки  могат  да повлияят  
на разпределението  на изпитваното  вещество  и/или продуктите  
от трансформацията  между  водната  и седиментната  фаза . 
Въпреки  това, при слаборазтворими  във вода  изпитвани  
вещества , употребата  на образувания  материал  може  да бъде  
подходяща  алтернатива . 
Броят  на инкубационните  съдове  зависи  от броя  на пробните  
времена  (вж. точка  1.9.3). В изпитването  трябва  да бъдат  
включени  достатъчно  на брой  системи  за изпитване , така че при 
всяко  пробно  време  по две системи  да могат  да бъдат  „пожертвани “. 
Когато  се оставят  контролни  сектори  във всяка  водноседиментна  
система , те не трябва  да бъдат  третирани  с изпитваното  вещество . 
Контролните  сектори  могат  да бъдат  използвани  за определяне  на 
микробната  биомаса  на седимента  и на общия  органичен  въглерод  
на водата  и седимента  при завършване  на изпитването . Два от 
контролните  сектори  (т.е. един  контролен  сектор  от всеки  воден  
седимент ) могат  да бъдат  използвани  за наблюдение  на изискваните  
параметри  в седимента  и водата  по време  на аклиматизационния  
период  (вж. таблицата  в точка  1.8.2.2). Трябва  да бъдат  включени  
два допълнителни  контролни  сектора  за измерване  на вредните  
въздействия  върху  микробната  активност  на изпитваната  система , 
в случай  че изпитваното  вещество  се прилага  чрез разтворител . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1317  
( 1 ) Провеждането  на изпитване  с втора  концентрация  може  да бъде  от полза  при 
химикали , които  попадат  в повърхностните  води  чрез различни  пътища  на 
въвеждане , водещи  до напълно  различни  концентрации , докато  по-ниските  конце­  
нтрации  могат  да бъдат  анализирани  с достатъчна  точност .
 1.9.3.  Продължителност  на изпитването  и вземане  на проби  
Обикновено  продължителността  на експеримента  не трябва  да 
превишава  100 дни (6) и трябва  да продължи  до установяване  на 
пътя  на разграждане  и модела  на разпределение  вода /седимент  
или когато  90 % от изпитваното  вещество  е разпръснато  поради  
трансформация  и/или летливост . Броят  на пробните  времена  
трябва  да бъде  най-малко  шест  (включително  нулево  време ), 
като се провежда  незадължително  предварително  изпитване  
(вж. точка  1.9.4), за да се установят  подходящият  режим  на 
пробите  и продължителността  на изпитването , освен  ако има 
достатъчно  налични  данни  за изпитваното  вещество  от 
предишни  изпитвания . За хидрофобни  изпитвани  вещества  
може  да бъдат  необходими  допълнителни  пробоотборни  точки  
в началния  период  на изпитването , за да се определи  степента  на 
разпределение  между  водната  и седиментната  фаза . 
При съответните  пробни  времена  всички  инкубационни  съдове  
(с репликите ) се изваждат  за анализ . Седиментът  и покриващата  
го вода  се анализират  поотделно  ( 1 ). Повърхностната  вода  
трябва  внимателно  да бъде  отстранена  при минимално  възде­  
йствие  върху  седимента . Екстрахирането  и охарактеризирането  
на изпитваното  вещество  и на продуктите  от трансформацията  
трябва  да следват  подходящата  аналитична  процедура . Трябва  да 
бъде  обърнато  внимание  на отделянето  на материала , който  
може  да бъде  адсорбиран  от инкубационния  съд, или на 
използваните  свързващи  тръби  за улавяне  на летливи  
съединения . 
1.9.4.  Възможно  (незадължително ) предварително  изпитване  
Ако продължителността  и режимът  за вземане  на проби  не 
могат  да бъдат  оценени  по други  съответстващи  изследвания  
на изпитващото  вещество , може  да бъде  счетено  за подходящо  
провеждането  на незадължително  предварително  изпитване , 
което  трябва  да бъде  проведено  при същите  условия  на 
изпитване  както  прилаганите  в окончателното  изпитване . Съотв­  
етните  експериментални  условия  и резултатите  от предварит­  
елното  изпитване , ако е проведено  такова , трябва  кратко  да 
бъдат  отчетени . 
1.9.5.  Измервания  и анализи  
Концентрацията  на изпитваното  вещество  и на продуктите  от 
трансформацията  за всяко  пробно  време  във водата  и в 
седимента  трябва  да бъде  измерена  и отчетена  (като конце­  
нтрация  и като процент  на приложената ). Най-общо , продуктите  
от трансформацията , открити  при ≥ 10 % приложена  радио­  
активност  върху  цялата  водноседиментна  система , при всяко  
пробно  време , трябва  да бъдат  идентифицирани , освен  ако не 
е посочено  разумно  обяснение . Продуктите  от трансформацията , 
чиито  концентрации  непрекъснато  нарастват  по време  на 
изпитването , също  трябва  да бъдат  отчетени  за идентифициране , 
дори  ако техните  концентрации  не надвишават  посочените  по- 
горе граници , тъй като това може  да индикира  за устойчивост . 
Последните  трябва  да бъдат  отчитани  за всеки  отделен  случай  и 
да се посочат  в протокола  заедно  със съответните  обяснения . 
Резултатите  от системите  за улавяне  на газове /летливи  
съединения  (СО 2 и други , т.е. летливи  органични  съединения ) 
трябва  да бъдат  отчетени  за всяко  пробно  време . Трябва  да 
бъдат  отчетени  и степените  на минерализация . Неек­  
страхируемите  (крайните ) остатъци  в седимента  също  трябва  
да бъдат  отчетени  за всяка  пробоотборна  точка . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1318  
( 1 ) В случаите , при които  е възможно  да се получи  бързото  преокисляване  на прод­  
уктите  от анаеробната  трансформация , при вземането  на проби  и при 
анализирането  трябва  да бъдат  поддържани  анаеробни  условия .
 2. ДАННИ  
2.1. ОБРАБОТВАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Общият  масов  баланс  или възстановяването  (вж. точка  1.7.1) на 
допълнителната  радиоактивност  се изчислява  за всяко  пробно  
време . Резултатите  трябва  да бъдат  отчетени  като резултат  от 
допълнителната  радиоактивност . Разпределението  на радио­  
активността  между  водата  и седимента  трябва  да бъда  
отчетено  като концентрации  и като проценти  за всяко  пробно  
време . 
Времето  за полуразпад , DT  50 и, ако е подходящо , DT  75 и DT  90 
на изпитваното  вещество  трябва  самостоятелно  да бъдат  
изчислени  с техните  доверителни  интервали  (вж. точка  1.7.3). 
Информация  за степента  на разсейване  на изпитваното  
вещество  във водата  и в седимента  може  да бъде  получена  
чрез използването  на подходящи  инструменти  за оценка . Те 
могат  да обхващат : прилагане  на псевдокинетика  от първи  
порядък , техники , свързани  с емпиричната  крива , които  
прилагат  графични  или цифрови  решения , и използване  на по- 
комплексни  оценки , например  едно - или многостъпални  модели . 
Повече  подробности  могат  да бъдат  получени  от съответната  
публикувана  литература  (35) (36) (37).  
Всички  подходи  имат  своите  силни  и слаби  страни  и са разно­  
образни  по отношение  сложността  им. Основно  положение  
(предпоставка  за избор ) на кинетиката  от първи  порядък  може  
да бъде  свръхрационализирането  (прекомерното  опростяване ) на 
процесите  на разграждане  и разпределение , а когато  е възможно , 
тя предоставя  показател  (степенна  константа  или на полуразпад ), 
който  е лесно  разбираем  и стойността  му се получава  чрез 
използването  на симулационен  модел  и изчисления  при 
предвидими  концентрации  в околната  среда . Емпиричните  
подходи  или линейните  трансформации  могат  да доведат  до 
по-добра  връзка  между  кривите  и данните , и следователно  да 
позволят  по-точно  определяне  на стойностите  на времето  за 
полуразпад , DT  50 и, ако е подходящо , DT  75 и DT  90 . 
Използването  на диференцирани  константи  обаче  е ограничено . 
Степенните  модели  могат  да създадат  определени  константни  
величини , които  да са от полза  при оценката  на риска , 
описват  степента  на разграждане  при различните  степени  и 
разпределението  на химикала . Те трябва  да бъдат  използвани  
също  при оценяване  на степенните  константи  на образуване  и 
разграждане  на основните  продукти  от трансформацията . При 
всички  случаи  изборът  на конкретния  метод  трябва  да бъде  
обоснован  и експериментаторът  трябва  графично  и/или статист­  
ически  да демонстрира  преимуществата  му. 
3. ОТЧИТАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  следната  
информация : 
Изпитвано  вещество : 
— търговско  наименование , химично  наименование , CAS 
номер , структурна  формула  (показваща  положението  на 
етикета (ите), когато  се използва  материал  с маркиран  радио­  
активен  изотоп ) и съответните  физикохимични  свойства ; 
— степен  на чистота  (примеси ) на изпитваното  вещество ; 
— радиохимична  степен  на чистота  на маркиран  химикал  и 
моларна  активност  (където  е подходящо ). ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1319
 
Вещества  за сравнение : 
— химично  наименование  и структура  на веществата  за 
сравнение , използвани  за охарактеризиране  и/или идент­  
ифициране  на продуктите  от трансформацията . 
Изпитвани  седименти  и води : 
— местоположение  и описание  на местата  за вземане  на водни  
седиментни  проби , включително , ако е възможно , история  на 
замърсяването ; 
— цялата  информация , свързана  със събирането , съхранението  
(ако има) и аклиматизирането  на водноседиментните  
системи ; 
— характеристики  на водноседиментните  проби , както  е 
посочено  в таблицата  от точка  1.8.2.2.  
Условия  на изпитването : 
— използвана  система  за изпитване  (напр . проточна , биом­  
етрична , начин  на вентилация , метод  за разбъркване , обем  
на водата , маса  на седимента , дебелина  на двата  слоя  – воден  
и седиментен , размери  на съдовете  за изпитване  и др.); 
— прилагане  на изпитваното  вещество  в системата  за 
изпитване : използвана  концентрация  за изпитване , брой  на 
репликите  и контролите , начин  на прилагане  на изпитваното  
вещество  (напр . употреба  на разтворител , ако има) и др.; 
— инкубационна  температура ; 
— времена  на пробите ; 
— екстракционни  методи  и тяхната  ефективност , както  и анал­  
итични  методи  и граници  на откриване ; 
— методи  за охарактеризиране /идентифициране  на продуктите  
от трансформацията ; 
— отклонения  от протокола  за изпитването  или условията  на 
изпитването  по време  на експеримента . 
Резултати : 
— фигури  със „сурови “ (необработени ) данни  от предста­  
вителни  анализи  (всички  „сурови “ данни  трябва  да бъдат  
съхранени  в GLP-архив ); 
— повторяемост  и чувствителност  на използваните  аналитични  
методи ; 
— степени  на възстановяване  (% стойности  за валиден  
експеримент  са посочени  в точка  1.7.1);  
— таблици  с резултати , изразени  като процент  на приложената  
доза и в mg.kg  -l във вода , седимент  и цялата  система  (само  в 
проценти ), на изпитваното  вещество  и, ако е подходящо , на 
продуктите  от трансформацията  и неекстрахируемата  радио­  
активност ; 
— масов  баланс  по време  и в края  на изпитванията ; 
— графично  представяне  на трансформацията  във водната  и 
седиментната  фракция  и в цялата  система  (включително  
минерализация ); 
— степени  на минерализация ; ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1320
 
— стойности  на времето  на полуразпад , DT  50 и, ако е 
подходящо , на DT  75 и DT  90 за изпитваното  вещество  и, 
където  е подходящо , за основните  продукти  от транс­  
формацията , включително  доверителни  интервали  във вода , 
седимент  и в цялата  система ; 
— оценка  на кинетиката  на трансформацията  на изпитваното  
вещество  и, където  е подходящо , на основните  продукти  от 
трансформацията ; 
— предлагани  пътища  на трансформация , където  е подходящо ; 
— обсъждане  на резултатите . 
4. ПРЕПРАТКИ  
(1) BBA-Guidelines for the examination of plant protectors in the 
registration process. (1990). Part IV, Section 5—1: Degrada ­
bility and fate of plant protectors in the water/sediment system. 
Germany.  
(2) Commission for registration of pesticides: Application for 
registration of a pesticide. (1991). Part G. Behaviour of the product and its metabolites in soil, water and air, Section 
G.2.1 (a). The Netherlands.
 
(3) MAFF Pesticides Safety Directorate. (1992). Preliminary 
guideline for the conduct of biodegradability tests on pesticides 
in natural sediment/water systems. Ref № SC 9046. United- 
Kingdom.  
(4) Agriculture Canada: Environmental chemistry and fate. (1987). 
Guidelines for registration of pesticides in Canada. Aquatic 
(Laboratory) — Anaerobic and aerobic. Canada, pp 35—37.  
(5) US-EPA: Pesticide assessment guidelines, Subdivision N. 
Chemistry: Environmental fate (1982). Section 162—3, 
Anaerobic aquatic metabolism.  
(6) SETAC-Europe publication. (1995). Procedures for assessing 
the environmental fate and ecotoxicity of pesticides. Ed. Dr Mark R. Lynch. SETAC-Europe, Brussels.
 
(7) OECD Test Guidelines Programme. (1995). Final Report of the 
OECD Workshop on Selection of Soils/sediments, Belgirate, 
Italy, 18—20 January 1995.  
(8) ISO/DIS 5667—12. (1994). Water quality — Sampling — Part 
12: Guidance on sampling of bottom sediments.  
(9) US-EPA (1998a). Sediment/water microcosm biodegradation 
test. Harmonised Test Guidelines (OPPTS 835.3180). EPA 712-C-98-080.
 
(10) DFG: Pesticide Bound Residues in Soil. Wiley-VCH (1998).  
(11) T.R. Roberts: Non-extractable pesticide residues in soils and 
plants. Pure Appl. Chem. 56, 945—956 (IUPAC 1984).  
(12) OECD Test Guideline 304A: Inherent Biodegradability in Soil 
(adopted 12 May 1981).  
(13) OECD (1993): Guidelines for Testing of Chemicals. Paris. 
OECD (1994-2000): Addenda 6-11 to Guidelines for the 
Testing of Chemicals.  
(14) Scholz, K., Fritz R., Anderson C. and Spiteller M. (1988) 
Degradation of pesticides in an aquatic model ecosystem. 
BCPC — Pests and Diseases, 3B-4, 149—158.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1321
 
(15) Guth, J. A. (1981). Experimental approaches to studying the 
fate of pesticides in soil. In Progress in Pesticide Biochemistry 
(D.H. Hutson, T.R. Roberts, Eds.), Vol. 1, 85-114. J. Wiley & Sons.
 
(16) Madsen, T., Kristensen, P. (1997). Effects of bacterial inocu ­
lation and non-ionic surfactants on degradation of polycyclic 
aromatic hydrocarbons in soil. Environ. Toxicol. Chem. 16, 
631—637.  
(17) Steber, J., Wierich, P. (1987). The anaerobic degradation of 
detergent range fatty alcohol ethoxylates. Studies with  14 C- 
labelled model surfactants. Water Research 21, 661—667.  
(18) Black, C. A. (1965). Methods of Soil Analysis. Agronomy 
Monograph №. 9. American Society of Agronomy, Madison.  
(19) APHA (1989). Standard Methods for Examination of Water 
and Wastewater (17th edition). American Public Health Asso ­
ciation, American Water Works Association and Water 
Pollution Control Federation, Washington D.C.  
(20) Rowell, D. L. (1994). Soil Science Methods and Applications. 
Longman.  
(21) Light, T. S. (1972). Standard solution for redox potential 
measurements. Anal. Chemistry 44, 1038—1039.  
(22) SETAC-Europe publication (1991). Guidance document on 
testing procedures for pesticides in freshwater mesocosms. From the Workshop „A Meeting of Experts on Guidelines for Static Field Mesocosms Tests“, 3—4 July 1991.
 
(23) SETAC-Europe publication. (1993). Guidance document on 
sediment toxicity tests and bioassays for freshwater and 
marine environments. From the Workshop On Sediment Toxicity Assessment (WOSTA), 8—10 November 1993. Eds.: I. R. Hill, P. Matthiessen and F. Heimbach.
 
(24) Vink, J. P. M., van der Zee, S. E. A. T. M. (1997). Pesticide 
biотранс formation in surface waters: multivariate analyses of 
environmental factors at field sites. Water Research 31, 2858—2868.
 
(25) Vink, J. P. M., Schraa, G., van der Zee, S. E. A. T. M. (1999). 
Nutrient effects on microbial транс formation of pesticides in 
nitrifying waters. Environ. Toxicol, 329—338.  
(26) Anderson, T. H., Domsch, K. H. (1985). Maintenance carbon 
requirements of actively-metabolising microbial populations 
under  in-situ  conditions. Soil Biol. Biochem. 17, 197—203.  
(27) ISO-14240-2. (1997). Soil quality — Determination of soil 
microbial biomass — Part 2: Fumigationextraction method.  
(28) Beelen, P. Van and F. Van Keulen. (1990), The Kinetics of the 
Degradation of Chloroform and Benzene in Anaerobic 
Sediment from the River Rhine. Hydrobiol. Bull. 24 (1), 
13—21.  
(29) Shelton, D. R. and Tiedje, J. M. (1984). General method for 
determining anaerobic biodegradation potential. App. Environ. Microbiol. 47, 850—857.
 
(30) Birch, R. R., Biver, C, Campagna, R., Gledhill, W. E., Pagga, 
U., Steber, J., Reust, H. and Bontinck, W. J. (1989). Screening of chemicals for anaerobic biodegradation. Chemosphere 19, 1527—1550.
 
(31) Pagga, U. and Beimborn, D. B. (1993). Anaerobic biodegra ­
dation tests for organic compounds. Chemoshpere 27, 
1499—1509.  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1322
 
(32) Nuck, B. A. and Federle, T. W. (1986). A batch test for 
assessing the mineralisation of 14C-radiolabelled compounds 
under realistic anaerobic conditions. Environ. Sci. Technol. 30, 3597—3603.
 
(33) US-EPA (1998b). Anaerobic biodegradability of organic 
chemicals. Harmonised Test Guidelines (OPPTS 835.3400). 
EPA 712-C-98-090.  
(34) Sijm, Haller and Schrap (1997). Influence of storage on 
sediment characteristics and drying sediment on sorption coef ­
ficients of organic contaminants. Bulletin Environ. Contam. Toxicol. 58, 961—968.
 
(35) Timme, G., Frehse H. and Laska V. (1986) Statistical inter ­
pretation and graphic representation of the degradational behaviour of pesticide residues II. Pflanzenschutz — Nach ­
richten Bayer, 39, 187—203.
 
(36) Timme, G., Frehse, H. (1980) Statistical interpretation and 
graphic representation of the degradational behaviour of 
pesticide residues I. Pflanzenschutz — Nachrichten Bayer, 33, 47—60.
 
(37) Carlton, R. R. and Allen, R. (1994). The use of a compartment 
model for evaluating the fate of pesticides in sediment/water 
systems. Brighton Crop Protection Conference — Pest and Diseases, pp 1349—1354.
 ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1323
 
Приложение  1 
РЪКОВОДСТВО  ЗА АЕРОБНИ  И АНАЕРОБНИ  СИСТЕМИ  ЗА 
ИЗПИТВАНЕ  
Аеробна  система  за изпитване  
Аеробната  система  за изпитване , описана  в настоящия  метод , се състои  от 
аеробен  воден  слой  (обикновено  концентрациите  на кислород  са в обхвата  
от 7 до 10 mg.l  -l ) и седиментен  слой , аеробен  на повърхността  и анаеробен  
под повърхността  (обикновено  средната  стойност  на редоксипотенциала  
(E h ) в анаеробната  зона на седимента  е в обхвата  от – 80 до – 190 mV). 
Над повърхността  на водата  във всяка  инкубационна  единица  преминава  
влажен  въздух , за да се поддържа  достатъчно  количество  кислород  в 
горното  пространство . 
Анаеробна  система  за изпитване  
При анаеробната  система  за изпитване  процедурата  за изпитване  основно  е 
същата  както  тази, изложена  за аеробната  система  за изпитване , с 
изключение  на това, че над повърхността  на водата  във всяка  инкубационна  
единица  преминава  влажен  азот, за да се поддържа  достатъчно  количество  
азот в горното  пространство . Седиментът  и водата  се разглеждат  като 
анаеробни , щом  редоксипотенциалът  (E h ) е по-нисък  от – 100 mV.  
При анаеробно  изпитване  оценката  на минерализацията  включва  измерване  
на отделените  въглероден  диоксид  и метан . ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1324
 
Приложение  2 
ПРИМЕР  ЗА ГАЗОПРОТОЧНА  АПАРАТУРА
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1325
 
Приложение  3 
ПРИМЕР  ЗА БИОМЕТРИЧНА  АПАРАТУРА
  ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1326
 
Приложение  4 
ПРИМЕРНО  ИЗЧИСЛЕНИЕ  НА АПЛИКАЦИОННАТА  ДОЗА  ЗА 
СЪДОВЕТЕ  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
Вътрешен  диаметър  на цилиндъра : = 8 cm 
Дълбочина  на водната  колона , несъдържаща  
седимент : = 12 cm 
Повърхностна  площ : 3,142 × 4  2 50,3 cm  2 
Апликационно  ниво : 500 g изпитвано  
вещество /ha съответстват  на 5 μg/cm  2 
Общо  μg: 5 × 50,3 = 251,5 μg 
Пригодено  количество  към дълбочина  
100 cm: 
12 × 251,5 ÷ 100 = 30,18 μg 
Обем  на водната  колона : 50,3 × 12 = 603 ml 
Концентрация  във вода : 30,18 ÷ 603 = 0,050 ( μg/ml или 50 μg/l ▼B 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1327
 
B.25.  АЕРОБНА  МИНЕРАЛИЗАЦИЯ  В ПОВЪРХНОСТНИ  ВОДИ  
— СИМУЛАЦИОННО  ИЗПИТВАНЕ  ЗА БИОРАЗГРАЖДАНЕ  
1. МЕТОД  
Този  метод  е еквивалентен  на ОИСР  TG 309 (2004)  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Целта  на това изпитване  е измерването  на продължителността  на 
биоразграждането  на изпитвано  вещество  при ниска  конце­  
нтрация  в аеробна  природна  вода  и количествена  оценка  на 
наблюденията  под формата  на кинетични  уравнения . Това  
симулационно  изпитване  представлява  лабораторно  серийно  
изпитване  в колба , което  има за цел определяне  степента  на 
биоразграждане  на органични  вещества  чрез изследване  на 
проби  от природни  повърхностни  води  (прясна , полусолена  
или морска ). То се базира  на ISO/DIS 14592—1 (1), като 
включва  и елементи  от методите  на изпитване  C.23 и C.24 (2)(3). 
По избор , при голяма  продължителност  на времето  за 
изпитванията  серийният  способ  се заменя  с полунепрекъсваем , 
с цел да се предотврати  влошаването  на микросистемата  за 
изпитване . Основната  цел на симулационното  изпитване  е 
определянето  на минерализацията  на изпитваното  вещество  в 
повърхностна  вода , а минерализацията  служи  като основа  за 
изразяването  на кинетиката  на разграждането . При все това, 
изпитването  има и една  второстепенна  незадължителна  цел — 
да се получи  информация  за първичното  разграждане  и за 
формирането  на основните  продукти  от трансформацията . 
Идентифицирането  на продуктите  на трансформацията  и, по 
възможност , определяне  на концентрациите  им са особено  
важни  в случая  на вещества , които  се минерализират  много  
бавно  (напр . с период  на полуразпад  за общ остатъчен  14 C, 
надхвърлящ  60 дни). Поради  аналитични  ограничения , за идент­  
ифициране  и количествена  оценка  на основните  продукти  на 
трансформацията , обикновено  би следвало  да се използват  по- 
високи  концентрации  на изпитваното  вещество  (напр . 
> 100 μg/l). 
При това изпитване  ниска  концентрация  означава  концентрация  
(напр . по-малка  от 1 μg/l до 100 μg/l), която  е достатъчно  ниска , 
за да гарантира , че кинетиката  на биоразграждането , получена  
при изпитването , отразява  тази, която  се очаква  в околната  
среда . Сравнено  с общата  маса  на биоразградими  въглеродни  
субстрати , налични  в природната  вода , използвана  в 
изпитването , изпитваното  вещество  с ниска  концентрация  ще 
послужи  като вторичен  субстрат . Това  предполага , че 
очакваната  кинетика  на биоразграждане  е от първи  порядък  
(„ненарастваща “ кинетика ), както  и че изпитваното  вещество  
може  да бъде  разградено  чрез „кометаболизъм “. Кинетиката  от 
първи  порядък  означава , че скоростта  на разграждане  (mg/L/ден) 
е пропорционална  на концентрацията  на субстрата , която  
намалява  с времето . При същинската  кинетика  от първи  
порядък  специфичната  константа  на скоростта  на разграждане  
— k не зависи  от времето  и концентрацията , т.е. k не се 
изменя  осезаемо  по време  на експеримента  и не се влияе  от 
добавената  концентрация  между  отделните  експерименти . По 
дефиниция  специфичната  константа  на скоростта  на 
разграждане  е равна  на относителната  промяна  на скоростта  
във времето : k = (1/C) · (dC/dt). Макар  и при зададените  
условия  обикновено  се очаква  кинетика  от първи  порядък , 
възможно  е наличието  на определени  обстоятелства , при които  
да е по-подходяща  друг  вид кинетика . Отклонения  от кинетика  
от първи  порядък  могат  да се наблюдават , например  ако 
проявата  на масов  трансфер , какъвто  е скоростта  на дифузия , 
вместо  да ограничи  скоростта  на биологична  реакция , 
ограничава  скоростта  на биотрансформация . Въпреки  това, 
данните  почти  винаги  могат  да бъдат  описани  чрез кинетика  
от псевдо -първи  порядък , приемайки  зависима  от конце­  
нтрацията  константа  на скоростта . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1328
 
Информация  за биоразграждането  на изпитваното  вещество  при 
по-високи  концентрации  (напр . от стандартни  скрининг  
изпитвания ), както  и информация  за абиотичната  
биоразградимост , продуктите  на трансформацията  и съответните  
физико -химични  свойства , следва  да бъде  налична  преди  
започване  на изпитването , за да се подпомогне  планирането  на 
експеримента  и интерпретирането  на резултатите . Използването  
на маркирани  с 14 C изпитвани  вещества  и определянето  на 
фазовото  разпределение  на 14 C в края  на изпитването  позволяват  
установяването  на пълната  биоразградимост . При използване  на 
немаркирани  изпитвани  вещества  пълната  биоразградимост  
може  да бъде  установена  единствено  при изпитване  на по- 
високи  концентрации  и ако са известни  всички  основни  
продукти  на трансформацията . 
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Първично  биоразграждане : Структурната  промяна  (транс­  
формация ) на химичното  вещество  под влияние  на микроорга­  
низми , в резултат  на което  настъпва  загуба  на химичната  
природа . 
Функционално  биоразграждане : Структурната  промяна  (транс­  
формация ) на химично  вещество  под влияние  на микроорга­  
низми , в резултат  на което  настъпва  загуба  на определено  
свойство . 
Пълно  аеробно  биоразграждане : Разпадането  на дадено  
химично  вещество  под действието  на микроорганизми  в присъ­  
ствието  на кислород  до въглероден  диоксид , вода  и минерални  
соли  на други  налични  елементи  (минерализация ) и произво­  
дството  на нова  биомаса  и органични  продукти  на 
микробиалния  биосинтез . 
Минерализация : Разлагането  на дадено  химично  вещество  или 
органична  материя  под действието  на микроорганизми  и при 
наличието  на кислород  до въглероден  диоксид , вода  и 
минерални  соли  на някакви  други  налични  елементи . 
Латентен  период : Периодът  от началото  на изпитването  до 
момента  на адаптация  на разлагащите  се микроорганизми  и на 
осезаемо  увеличаване  на степента  на биоразграждане  на дадено  
химично  вещество  или органична  материя  (напр . 10 % от макс­  
ималното  теоретично  биоразграждане  или по-нисък  процент , в 
зависимост  от точността  на способа  за измерване ). 
Максимална  степен  на биоразграждане : Степента  на 
биоразграждане  на дадено  химично  вещество  или органична  
материя  по време  на изпитване , измерена  в проценти , над 
която  не се наблюдава  допълнително  биоразграждане  в 
рамките  на изпитването . 
Първичен  субстрат : Съвкупност  от естествен  въглерод  и 
енергийни  източници , осигуряващи  растеж  и поддържане  на 
микробиалната  биомаса . 
Вторичен  субстрат : Субстратна  съставка , налична  в толкова  
ниска  концентрация , че при нейното  биоразграждане  на съотв­  
етните  микроорганизми  се доставят  незначителни  количества  
въглерод  и енергия , в сравнение  с въглерода  и енергията , 
получени  при разграждането  на основните  субстратни  съставки  
(първични  субстрати ). 
Скоростна  константа  на разграждане : Скоростна  константа  от 
първи  порядък  или псевдо -първи  порядък  k (d  –1 ), показва  
скоростта  на процесите  на разграждане . При серийните  
експерименти  k се изчислява  от началната  част на кривата  на 
разграждане , получена  след  края  на латентната  фаза . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1329
 
Период  на полуразпад , t  1/2 (d): Термин , използван  за 
характеризиране  на скоростта  на реакция  от първи  порядък . 
Представлява  интервала  от време , съответстващ  на двукратно  
намаляване  на концентрацията . Полуразпадът  и скоростната  
константа  на разграждане  са свързани  чрез уравнението  
t 1/2 = ln2/k.  
Период  на полуразграждане , DT  50 (d): термин , използван  за 
количествено  определяне  на резултата  от изпитванията  за 
биоразграждане . Представлява  интервала  от време , включително  
и латентната  фаза , който  е необходим  за достигането  на 
стойност  на биоразграждане  от 50 %.  
Граница  на откриваемост  (LOD) и граница  на количествено  
определяне  (LOQ) : Границата  на откриваемост  (LOD) 
представлява  концентрацията  на дадено  вещество , под която  
видът  на веществото  не може  да бъде  разграничен  от анал­  
итични  продукти . Границата  на количествено  определяне  
(LOQ) представлява  концентрацията  на дадено  вещество , под 
която  концентрацията  не може  да бъде  установена  с 
приемлива  точност . 
Разтворен  органичен  въглерод  (DOC) : Онази  част от орга­  
ничния  въглерод  във водна  проба , която  не може  да бъде  
отделена  чрез определеното  фазово  разделяне , например  чрез 
центрофугиране  при 40 000 ms  –2 в продължение  на 15 минути  
или чрез мембранно  филтриране , използвайки  мембрани  с 
отвори  с диаметър  0,2 μm — 0,45 μm. 
Активност  на общия  органичен  14 C (TOA) : Общата  активност  
на органичен  14 C, свързана  с органичния  въглерод . 
Активност  на разтворения  органичен  14 C (DOA) : 
Общата  активност  на 14 C, свързана  с разтворения  органичен  
въглерод . 
Активност  на органичен  14 C под формата  на твърди  
частици  (POA) : общата  активност  на 14 C, свързана  с орга­  
ничния  въглерод  под формата  на твърди  частици . 
1.3. ПРИЛОЖИМОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Симулационното  изпитване  е приложимо  за нелетливи  или слабо  
летливи  органични  вещества , изпитвани  при ниски  концентрации . 
При използването  на отворени  колби  в контакт  с атмосферата  
(напр . със запушалки  от вата), веществата  с константи  по закона  
на Хенри  под около  1 Pa·m  3 /mol (приблиз . 10  –5 atm·m  3 /mol) могат  
да се считат  за практически  нелетливи . При използването  на 
затворени  колби  за парофазов  анализ  е възможно  изпитването  на 
слабо  летливи  вещества  (с константа  по закона  на Хенри  
< 100 Pa·m  3 /mol или < 10  –3 atm·m  3 /mol) без загуби  от системата  
за изпитване . Загуба  на вещества , маркирани  с 14 C, може  да 
възникне , ако не се вземат  съответните  предпазни  мерки , при 
отстраняването  на въглероден  диоксид . В такива  ситуации  може  
да се наложи  улавянето  на въглеродния  диоксид  във вътрешен  
абсорбер  с основа  или използването  на външна  абсорбционна  
система  за въглероден  диоксид  (директно  определяне  на 14 CO 2 ; 
вж. 3). За определянето  на кинетиката  на биоразграждането  конце­  
нтрациите  на изпитваното  вещество  трябва  да бъдат  под степента  
на неговата  водоразтворимост . Въпреки  това, следва  да се 
отбележи , че данните  от научни  източници  за водоразтворимостта  
могат  да са значително  по-високи  от разтворимостта  на 
изпитваното  вещество  в природни  води . По избор  може  да бъде  
установена  разтворимостта  на особено  слабо  водоразтворими  
изпитвани  вещества , като се използват  изпитваните  природни  води . 
Методът  може  да бъде  използван  за симулиране  на 
биоразграждане  в повърхностни  води  без наличие  на груби  
частици  (пелагично  изпитване ) или в мътна  повърхностна  
вода , която  примерно  може  да се намира  в близост  до воден /­ 
седиментен  обект  (изпитване  със суспендирани  утайки ). ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1330
 
1.4. ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Изпитването  се провежда  на серии  чрез инкубиране  на изпитваното  
вещество  или само  с повърхностна  вода  (пелагично  изпитване ), или 
с повърхностна  вода  с наличие  на суспендирани  неразтворени  
вещества /утайки  със сухо  вещество  от 0,01 до 1 g/l (изпитване  със 
суспендирани  утайки ) с цел да се симулира  воден  обект  със 
суспендирани  неразтворени  вещества  или ресуспендирани  утайки . 
За повечето  повърхностни  води  е типично  концентрацията  на 
суспендираните  неразтворени  вещества /утайки  да попада  в 
долната  част на този интервал . Колбите  за изпитване  се 
инкубират  на тъмно  при температура  като на околната  среда , при 
аеробни  условия  и с разклащане . За определянето  на кинетиката  на 
разграждане  е необходимо  използването  на най-малко  две различни  
концентрации  на изпитваното  вещество . Концентрациите  трябва  да 
се различават  помежду  си от 5 до 10 пъти  и трябва  да отразяват  
очаквания  диапазон  на концентрации  в околната  среда . Максим­  
алната  концентрация  на изпитваното  вещество  не трябва  да 
надвишава  100 μg/L, но максимални  концентрации  на изпитване  
под 10 μg/L или по-ниски  са предпочитани  с оглед  обезпечаване  
на кинетика  на биоразграждане  от първи  порядък . Най-ниската  
концентрация  не трябва  да превишава  10 μg/L, но се предпочитат  
минимални  концентрации  на изпитване  от 1—2 μg/L или по-ниски  
от 1 μg/L. Обикновено  задоволителен  анализ  на подобни  ниски  
концентрации  може  да бъде  постигнат  чрез използването  на 
предлагани  в търговската  мрежа  вещества , маркирани  с 14 C. 
Поради  аналитични  ограничения  често  е невъзможно  да се 
измери  концентрацията  на вещество  с изискваната  точност , ако 
изпитваното  вещество  се използва  в концентрация  ≤ 100 μg/L 
(вж. втора  алинея  от раздел  1.7.2). По-високи  концентрации  на 
изпитваното  вещество  (> 100 μg/L и понякога  > 1 mg/L) могат  да 
се използват  за идентифициране  и количествено  определяне  на 
основните  продукти  на трансформация  или при липсата  на спец­  
ифичен  метод  за анализ  с ниска  граница  на откриваемост . При 
изпитване  на вещества  при високи  концентрации  може  да се 
окаже  невъзможно  използването  на резултатите  за изчисляване  на 
константата  на разграждане  от първи  порядък  и периода  на 
полуразпад , тъй като разграждането  вероятно  няма  да протича  по 
кинетичен  модел  от първи  порядък . 
Процесът  на разграждане  се наблюдава  през определени  интервали  
от време , измервайки  или остатъчния  14 C, или остатъчната  конце­  
нтрация  на изпитваното  вещество , при използването  на специфичен  
химичен  анализ . Маркирането  на най-стабилната  част от молекулата  
с 14 C осигурява  определянето  на общата  минерализация , докато  
маркирането  с 14 C на по-нестабилната  част от молекулата , както  и 
използването  на специфичен  анализ  позволява  оценката  единствено  
на първичното  биоразграждане . Въпреки  това, най-стабилната  част 
не включва  непременно  съответната  функционална  група  на 
молекулата  (която  може  да е свързана  със специфични  свойства  
като токсичност , биоакумулиране  и др.). В такъв  случай  по- 
подходящо  би било  използването  на маркирано  с 14 C изпитвано  
вещество  във функционалната  му част с цел да се проследи  
елиминирането  на специфичното  свойство . 
1.5. ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
За това изпитване  могат  да бъдат  използвани  както  радио­  
маркирани , така и немаркирани  изпитвани  вещества . Препоръчва  
се методът  за маркировка  с 14 C, като обикновено  маркировката  
трябва  да става  в най-стабилната (ите) част(и) на молекулата  (вж. 
също  раздел  1.4). При вещества , които  съдържат  повече  от един  
ароматен  пръстен , е за предпочитане  един  или два въглеродни  
атома  във всеки  пръстен  да бъдат  маркирани  с 14 C. В допълнение  
към това, за предпочитане  е един  или повече  въглеродни  атома  от 
двете  страни  на лесно  разпадащи  се връзки  да са маркирани  с 14 C. 
Химичната  и/или радиохимичната  чистота  на изпитваното  
вещество  трябва  да бъдат  > 95 %. За радиомаркирани  вещества  е 
за предпочитане  специфична  активност  от приблизително  
50 μCi/mg (1,85 MBq) или повече  с цел да се улесни  измерването  
на 14 C при изпитвания , провеждани  при ниски  първоначални  
концентрации . Трябва  да е налична  следната  информация  за 
изпитваното  вещество : ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1331
 
— разтворимост  във вода  [метод  A.6];  
— разтворимост  в органичен (ни) разтворител (и) (вещества , 
използвани  с разтворители , или вещества  с ниска  водоразт­  
воримост ); 
— дисоциационна  константа  (pKa), ако веществото  е склонно  
към протониране  или депротониране  [ОИСР  TG 112] (4);  
— парен  натиск  [метод  A.4] и константа  по закона  на Хенри ; 
— химична  стабилност  във вода  и на тъмно  (хидролиза ) 
[метод  C.7].  
Когато  вещества  с ниска  водоразтворимост  се изпитват  в морска  
вода , полезно  би било  да се разполага  с информация  за 
константата  на обезсоляване  (или константата  „Setschenow“) 
K s , която  се определя  от следното  уравнение : log (S/S') = K  s 
C m , където  S и S' са разтворимостите  на веществото  съответно  
в прясна  вода  и в морска  вода , а C m е моларната  концентрация  
на солта . 
Ако изпитването  се провежда  като „изпитване  със суспендирани  
утайки “ трябва  да се разполага  и със следната  информация : 
— коефициент  на разпределение  n-октанол /вода  [метод  A.8];  
— коефициент  на адсорбция  [метод  C.18].  
Друга  полезна  информация  включва : 
— концентрация  в околната  среда , ако е известна  или 
изчислена ; 
— токсичност  на изпитваното  вещество  спрямо  
микроорганизми  [метод  C.11];  
— пряка  и/или присъща  биоразградимост  [методи  C.4 A—F, 
C.12, C.9, ОИСР  TG 302 (4)];  
— аеробна  или анаеробна  биоразградимост  в почва  и 
изследвания  на преобразуването  утайка /вода  [методи  C.23, 
C.24].  
1.6. РЕФЕРЕНТНО  ВЕЩЕСТВО  
Като  референтно  вещество  трябва  да бъде  използвано  такова , 
което  обикновено  се разгражда  лесно  при аеробни  условия  
(напр . анилин  или натриев  бензоат ). Обикновено  очакваният  
период  на разграждане  на анилина  и на натриевия  бензоат  е 
под 2 седмици . Предназначението  на референтното  вещество  е 
да осигури  микробиална  активност  на водата  за изпитване  е в 
рамките  на определени  граници ; т.е. наличието  на активна  
микробиална  популация  във водата . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1332
 
1.7. КРИТЕРИИ  ЗА КАЧЕСТВО  
1.7.1.  Възстановяване  
Веднага  след  добавянето  на изпитваното  вещество  всяка  първон­  
ачална  изпитвана  концентрация  трябва  да бъде  проверявана  чрез 
измерване  на активността  на 14 C или в случая  с немаркирани  
вещества  — чрез химични  анализи , използвайки  най-малко  две 
проби . По този начин  се добива  информация  за приложимостта  
и повторяемостта  на аналитичния  метод , както  и за хомогенността  
в разпределянето  на изпитваното  вещество . Обикновено  за 
последващите  анализи  на данните  се използва  измерената  първон­  
ачална  активност  14 C или концентрацията  на изпитваното  
вещество , а не номиналната  концентрация , тъй като по този 
начин  се компенсират  загубите  в резултат  на грешки  при 
сорбцията  и дозирането . При маркирани  с 14 C изпитвани  
вещества  степента  на възстановяване  в края  на експеримента  се 
определя  от тегловния  баланс  (вж. последната  алинея  от 
раздел  1.8.9.4). В идеалния  случай  маркираният  като радио­  
активен  тегловен  баланс  трябва  да е в диапазона  от 90 % 
до 110 %, докато  аналитичната  точност  би следвало  да осигури  
първоначално  възстановяване  от порядъка  на 70—110 % по 
отношение  на немаркирани  изпитвани  вещества . Тези  диапазони  
трябва  да бъдат  разбирани  като целеви  и не трябва  да се използват  
като критерии  за приемане  на изпитването . По избор  аналитичната  
точност  може  да бъде  определена  за изпитваното  вещество  при по- 
ниска  концентрация  от първоначалната , както  и за основните  
продукти  на трансформацията . 
1.7.2.  Повторяемост  и чувствителност  на аналитичния  метод  
Повторяемостта  на аналитичния  метод  (включително  и ефикас­  
ността  на първоначалната  екстракция ) за количествено  определяне  
на изпитваното  вещество , както  и продуктите  на трансформацията , 
ако е уместно , трябва  да се проверят  чрез пет анализа  на репликати  
от отделните  пробовземания  от повърхностните  води . 
Границата  на откриваемост  (LOD) при аналитичния  метод  по 
отношение  на изпитваното  вещество  и на продуктите  на транс­  
формацията  трябва  да бъде  най-малко  1 % от първоначалното  
количество , използвано  в системата  за изпитване , ако е 
възможно . Границата  на количествено  определяне  (LOQ) 
трябва  да е равна  на или по-малка  от 10 % от използваната  
концентрация . Химичните  анализи  на редица  органични  
вещества  и техните  продукти  на трансформация  често  изискват  
изпитваното  вещество  да се прилага  в относително  висока  
концентрация , т.е. > 100 μg/L. 
1.8. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  НА ИЗПИТВАНЕ  
1.8.1.  Оборудване  
Изпитването  може  да се извърши  в конусовидни  или 
цилиндрични  колби  с подходяща  вместимост  (напр . 0,5 или 
1,0 литра ), затворени  със силиконови  или гумени  запушалки , 
както  и в серумни  колби , с непропускащи  CO  2 капачки  (напр . 
с мембрана  от бутиленов  каучук ). Друг  вариант  е извършване  на 
изпитването  при използването  на няколко  колби  и изследване  на 
целите  колби , най-малко  по две идентични , при всеки  интервал  
на вземане  на проби  (вж. последната  алинея  от раздел  1.8.9.1). 
При нелетливи  изпитвани  вещества , които  не са радио­  
маркирани , не се изисква  използването  на газонепропускащи  
тапи  или капачки ; за целта  са подходящи  тапи  от памук , 
които  предпазват  от замърсители  във въздуха  (вж. втора  
алинея  от раздел  1.8.9.1). Слабо  летливите  вещества  трябва  да 
бъдат  изпитвани  в система  от биометричен  тип при леко  
разбъркване  на повърхността  на водата . С цел по-сигурно  
предпазване  от бактериално  замърсяване , по желание  стъклените  
съдове  могат  да бъдат  стерилизирани  преди  употреба  чрез 
загряване  или автоклавиране . В допълнение  към това се 
използва  следното  стандартно  лабораторно  оборудване : 
— вибрационен  плот  или магнитни  бъркалки  за продължително  
разбъркване  на колбите  за изпитване ; ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1333
 
— центрофуга ; 
— pH-метър ; 
— турбидиметър  за измерване  на мътност ; 
— пещ или микровълнова  пещ за определяне  на сухото  
вещество ; 
— апаратура  за мембранно  филтриране ; 
— автоклав  или пещ за топлинна  стерилизация  на стъкленици ; 
— уреди  за обработка  на вещества , маркирани  с 14 C; 
— оборудване  за количествено  определяне  на 14 C активността  в 
проби  от улавящи  CO  2 разтвори  и, ако е необходимо , в 
проби  от утайки ; 
— аналитично  оборудване  за определянето  на изпитваното  
(и на референтното ) вещество , в случай  че се използва  спец­  
ифичен  химичен  анализ  (напр . газов  хроматограф , течен  
хроматограф  с високо  налягане ). 
1.8.2.  Изходни  разтвори  на изпитвани  вещества  
За приготвяне  на изходни  разтвори  на изпитвани  и референтни  
вещества  се използва  дейонизирана  вода  (вж. първа  алинея  от 
раздел  1.8.7). Дейонизираната  вода  не трябва  да съдържа  
вещества , които  са токсични  за микроорганизми , а разтвореният  
органичен  въглерод  (DOC) не трябва  да надвишава  1 mg/L (5).  
1.8.3.  Вземане  и транспортиране  на проби  от повърхностна  вода  
Мястото  за вземане  на проба  от повърхностна  вода  трябва  да 
бъдат  избирани  в съответствие  с целта  на изпитването  за всеки  
отделен  случай . При избора  на места  за вземане  на проби  трябва  
да се вземе  под внимание  информация  за евентуални  предишни  
земеделски , промишлени  или битови  въздействия . Ако е 
известно , че дадена  водна  среда  е била  замърсена  с изпитваното  
вещество  или с негови  структурни  аналози  в рамките  на 
последните  четири  години , тя не трябва  да се използва  за 
вземане  на проби , освен  ако изследователят  няма  за изрична  
цел проучването  на скоростите  на разграждане  в замърсени  в 
миналото  обекти . На мястото  на вземане  на пробата  трябва  да 
се измери  показателят  pH и температурата  на водата . Нещо  
повече , дълбочината  на вземане  на пробата  и видът  на водната  
проба  (напр . цвят  и мътност ) трябва  да бъдат  отчетени  (вж. 
раздел  3). Концентрацията  на кислород  и/или редоксипоте­  
нциалът  във вода  и в повърхностния  седиментен  слой  трябва  
да бъдат  измерени  с цел демонстриране  на аеробните  условия , 
освен  ако те не се подразбират  от външния  вид и наличната  
информация  за обекта . Повърхностната  вода  трябва  да бъде  
транспортирана  в основно  почистен  контейнер . По време  на 
транспортирането  температурата  на пробата  не трябва  да 
надвишава  значително  температурата , при която  се провежда  
изпитването . Ако времето  за транспортиране  на водните  проби  
надвиши  2 до 3 часа, се препоръчва  охлаждане  до 4 °C. Водната  
проба  не трябва  да бъде  замръзнала . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1334
 
1.8.4.  Съхранение  и подготовка  на повърхностната  вода  
За предпочитане  е изпитването  да започне  в рамките  на един  
ден след  вземане  на пробата . Съхранението  на водата , ако то е 
необходимо , трябва  да бъде  сведено  до минимум  и при всички  
случаи  не трябва  да надвишава  4 седмици . Водната  проба  трябва  
да бъде  съхранявана  при температура  от 4 °C и аерация  до 
момента  на нейното  използване . Преди  употреба  грубите  
частици  трябва  да бъдат  отстранени , например  чрез филтрация  
през найлонов  филтър  с размер  на отворите  около  100 μm или 
през груба  филтърна  хартия , или пък чрез утаяване . 
1.8.5.  Подготовка  на вода  заедно  с утайка  (по избор ) 
При извършване  на изпитването  със суспендирани  утайки  към 
колбите , съдържащи  природна  вода  (филтрирана  според  
указанията  на раздел  1.8.4 с цел отстраняване  на грубите  
частици ), се добавя  повърхностна  утайка  с цел получаване  на 
суспензия ; концентрацията  на суспендираните  неразтворени  
вещества  трябва  да бъде  между  0,01 и 1 g/L. Повърхностната  
утайка  трябва  да произлиза  от същия  място , от което  е взета  
водната  проба . В зависимост  от особеностите  на водната  
среда , повърхностната  утайка  може  да се характеризира  или с 
високо  съдържание  на въглерод  (2,5 — 7,5 %) и с фина  
текстура , или с ниско  съдържание  на въглерод  (0,5 — 2,5 %) 
и с груба  текстура  (2). Повърхностната  утайка  може  да се 
подготви  по следния  начин : извлечете  няколко  утаечни  ядки , 
използвайки  тръбичка  от прозрачна  пластмаса , изрежете  
горните  аеробни  слоеве  (от повърхността  до дълбочина  от 
около  максимум  5 mm) веднага  след  вземането  на пробите  и 
ги съберете  заедно . Формираната  по този начин  проба  от 
утайка  трябва  да бъде  транспортирана  в контейнер  с голямо  
свободно  въздушно  пространство  с цел осигуряване  на 
аеробни  условия  за утайката  (охладете  до 4 °C, ако транс­  
портирането  ще продължи  повече  от 2–3 часа). Пробата  от 
утайката  трябва  да бъде  суспендирана  във водата  за изпитване  
в съотношение  1:10 и съхранявана  при температура  от 4 °C и 
аерира  до момента  на използване . Съхраняването  на утайката , 
ако е необходимо , трябва  да бъде  сведено  до минимум  и при 
всички  случаи  не трябва  да надвишава  4 седмици . 
1.8.6.  Полунепрекъсната  процедура  (по избор ) 
Може  да бъде  необходима  продължителната  инкубация  (няколко  
месеца ), ако има дълъг  латентен  период  преди  да е възможно  
измерването  на значително  разграждане  на изпитваното  
вещество . Ако тази информация  е налична  от предходни  
изпитвания  на веществото , изпитването  може  да бъде  
инициирано  чрез използването  на полунепрекъснат  способ , 
който  позволява  периодичното  подновяване  на част от водата  
за изпитване  или суспензията  (вж. допълнение  2). Алтернативно , 
нормалното  серийно  изпитване  може  да бъде  премине  в полун­  
епрекъснато , ако в рамките  на приблизително  60 дни на 
изпитване  чрез сериен  способ  не е настъпило  никакво  
разграждане  на изпитваното  вещество  (вж. втора  алинея  от 
раздел  1.8.8.3).  
1.8.7.  Добавяне  на изпитваното  (или на референтното ) вещество  
За вещества  с висока  водоразтворимост  (> 1 mg/L) и ниска  
летливост  (с константи  по закона  на Хенри  < 1 Pa·m  3 /mol или 
< 10  –5 atm·m  3 /mol) може  да бъде  приготвен  изходен  разтвор  в 
дейонизирана  вода  (вж. раздел  1.8.2); подходящото  количество  
от изходния  разтвор  се добавя  в стъклените  съдове  за изпитване  
с цел постигане  на желаната  концентрация . Обемът  на даден  
добавен  изходен  разтвор  трябва  да бъде  сведен  до функц­  
ионалния  минимум  (< 10 % от крайния  обем  на течността , ако 
е възможно ). Друга  възможна  процедура  е разтварянето  на 
изпитваното  вещество  в по-голям  обем  от водата  за изпитване , 
което  може  да се счете  за алтернатива  на използването  на 
органични  разтворители . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1335
 
Ако е неизбежно , изходните  разтвори  на нелетливите  вещества  
със слаба  водоразтворимост  трябва  да се приготвят  чрез 
използването  на летлив  органичен  разтворител , но количеството  
разтворител , добавено  към системата  за изпитване , не трябва  да 
превишава  1 % v/v и не трябва  да оказва  неблагоприятен  ефект  
върху  микробиалната  активност . Разтворителят  не трябва  да 
влияе  върху  стабилността  на изпитваното  вещество  във вода . 
Разтворителят  трябва  да бъде  в изключително  малко  количество , 
за да не увеличи  чувствително  концентрацията  на DOC във 
водата  за изпитване  или в суспензията . Това  трябва  да се 
провери  чрез специфичен  за съответното  вещество  анализ , или, 
по възможност , чрез анализ  на DOC (5). Трябва  да се обезпечи  
ограничаването  на количеството  на прехвърления  разтворител  
до абсолютно  необходимото , както  и да се осигури  разтварянето  
на количеството  изпитвано  вещество  в крайния  обем  вода  за 
изпитване . Други  техники  за въвеждане  на изпитваното  
вещество  в стъклените  съдове  за изпитване  могат  да бъдат  
използвани , както  е указано  в (6) и (7). Когато  даден  
органичен  разтворител  се използва  за прилагане  на изпитваното  
вещество , контролните  проби  на разтворителя , съдържащи  вода  
за изпитване  (без никакви  добавки ) и водата  за изпитване  с 
добавено  към нея референтно  вещество  трябва  да бъдат  
обработени  по същия  начин  като използваните  стъклени  
съдове  за изпитване , допълнени  с изпитвано  вещество  в среда  
от разтворител . Целта  на контролните  проби  на разтворителите  е 
изследването  на евентуалните  неблагоприятни  ефекти  върху  
микробиалната  популация , причинени  от разтворителя , за 
които  свидетелства  разграждането  на референтното  вещество . 
1.8.8.  Условия  на изпитване  
1.8.8.1.  Температура  на изпитване  
Инкубацията  трябва  да се извърши  на тъмно  (за предпочитане ) или 
на слаба  светлина  при регулирана  температура  (± 2 °C), която  може  
да бъде  температура  на средата  или стандартна  температура  от 
20—25 °C. Температура  на средата  може  да бъде  или реалната  
температура  на пробата  към момента  на вземането  ѝ, или 
средната  околна  температура  на мястото  на вземане  на пробата . 
1.8.8.2.  Размесване  
Трябва  да се осигури  размесване  чрез непрекъснато  разклащане  
или разбъркване  с цел поддържане  на частиците  и на микроорга­  
низмите  в състояние  на суспензия . Размесването  улеснява  също  
трансфера  на кислорода  от въздуха  над течността , за да се 
осигури  поддържането  на подходящи  аеробни  условия . 
Поставете  колбите  върху  вибрационен  плот  (с приблизително  
100 rpm) или използвайте  магнитно  разбъркване . Размесването  
не трябва  да се прекъсва . Въпреки  това, разклащането  или 
разбъркването  трябва  да се извършват  възможно  най-деликатно , 
като същевременно  с това се поддържа  хомогенна  суспензия . 
1.8.8.3.  Продължителност  на изпитването  
Нормалната  продължителност  на изпитването  не трябва  да 
надвишава  60 дни, освен  ако не се използва  полунепрекъсната  
процедура  с периодично  подновяване  на изпитваната  суспензия  
(вж. раздел  1.8.6 и допълнение  2). При все това периодът  на 
изпитване  за серийното  изпитване  може  да бъде  удължен  до 
максимум  90 дни, ако разграждането  на изпитваното  вещество  
е започнало  в рамките  на първите  60 дни. Разграждането  се 
наблюдава  през съответните  интервали  от време , като се 
определя  остатъчната  активност  14 C или отделения  14 CO 2 (вж. 
раздел  1.8.9.4) и/или чрез химичен  анализ  (раздел  1.8.9.5). 
Инкубационният  период  трябва  да бъде  достатъчно  дълъг , за 
да позволи  оценяването  на процеса  на разграждане . За предп­  
очитане  е степента  на разграждане  да надвишава  50 %; за бавно  
разграждащи  се вещества  степента  на разграждане  трябва  да 
бъде  достатъчна  (обикновено  над 20 % разграждане ), за да 
позволи  определянето  на скоростната  константа  на процеса  на 
разграждане . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1336
 
Трябва  да се провеждат  периодични  измервания  на pH и конце­  
нтрацията  на кислород  в системата  за изпитване , освен  ако 
предходният  опит  от подобни  изпитвания  в проби  от вода  и 
утайка , взети  от същото  място , не правят  ненужно  извършването  
на такива  измервания . При определени  условия  метаболизмът  на 
първичните  субстрати  при много  по-високи  концентрации  във 
водата  или утайката  могат  да доведат  евентуално  до значителна  
промяна  на експерименталните  условия  по време  на изпитването  
под въздействието  на достатъчно  отделен  CO  2 и достатъчно  
намаляване  на кислорода . 
1.8.9.  Процедура  
1.8.9.1.  Подготовка  на колби  за пелагични  изпитвания  
Прехвърлете  подходящо  количество  вода  за изпитване  в колбите  за 
изпитване , запълвайки  до около  една  трета  от обема  на колбите , но 
не по-малко  от около  100 ml. При използването  на няколко  колби  
(за да е възможно  обработването  на цяла  колба  във всяко  време  на 
вземане  на проби ), подходящият  обем  вода  за изпитване  отново  е 
около  100 ml, тъй като малките  обеми  проби  могат  да повлияят  
върху  продължителността  на латентния  период . Изпитваното  
вещество  се добавя  от изходен  разтвор , както  е описано  в раздели  
1.8.2 и 1.8.7. Най-малко  две различни  концентрации  на изпитваното  
вещество , с разлика  помежду  си от 5 до 10 пъти , трябва  да бъдат  
използвани  с цел определянето  на кинетиката  на разграждане  и 
изчисляването  на скоростната  константа  на разграждане . И двете  
избрани  концентрации  трябва  да са по-малки  от 100 μg/L и за 
предпочитане  е да бъдат  в диапазона  < 1—10 μg/L. 
Затворете  колбите  със запушалки  или капаци , които  не пропускат  
въздух  и CO  2 . За немаркирани  с 14 C нелетливи  изпитвани  
вещества  са подходящи  тапи  от памук , които  предпазват  от 
замърсявания  от въздуха  (вж. раздел  1.8.1), при условие  че е 
известно , че основните  продукти  на разграждане  са нелетливи , 
както  и при индиректно  определяне  на CO  2 (вж. допълнение  3). 
Инкубирайте  колбите  при избраната  температура  (вж. 
раздел  1.8.8.1). Вземете  проби  за химичен  анализ  или измервания  
на 14 C в началото  на изпитването  (т.е. преди  да започне  
биоразграждането ; вж. раздел  1.7.1), а след  това през определени  
интервали  от време  в процеса  на изпитването . Вземането  на проби  
може  да се извърши  чрез отделяне  на подпроби  (напр . аликвотни  
части  от 5 ml) от всяка  репликата  или чрез вземане  на цели  колби  
при всяко  отделно  вземане  на проба . Минерализацията  на 
изпитваното  вещество  може  да бъде  определена  директно  или 
индиректно  (вж. допълнение  3). Обикновено  по време  на фазата  
на разграждане  са необходими  минимум  пет пробни  точки  (т.е. 
след  края  на латентния  период ), за да се определи  с достатъчна  
точност  скоростната  константа , освен  ако не съществуват  
основания  да се смята , че три пробни  точки  са достатъчни  за 
бързо  разграждащите  се вещества . За бавно  разграждащи  се 
вещества  могат  лесно  да бъдат  направени  повече  измервания  по 
време  на фазата  на разграждане  и в този случай  трябва  да се 
използват  повече  измервателни  точки  за определянето  на k. Не 
може  да бъде  установен  фиксиран  времеви  график  за вземане  на 
проби , тъй като скоростта  на биоразграждане  варира ; въпреки  
това, в случай  че процесът  на разграждане  е бавен , се препоръчва  
ежеседмично  вземане  на проби . Ако изпитваното  вещество  е 
бързо  разградимо , вземането  на проби  трябва  да се извършва  
веднъж  на ден по време  на първите  три дни, след  което  на всеки  
втори  или трети  ден. При определени  обстоятелства , като 
например  при много  бързо  хидролизиращи  вещества , може  да се 
наложи  ежечасно  вземане  на проби . Препоръчва  се да се извърши  
предварително  проучване  преди  началото  на изпитването , за да се 
определят  подходящите  интервали  за вземане  на проби . Ако е 
необходимо  наличието  на проби  за последващ  специфичен  
анализ , препоръчително  е да се вземат  повече  проби , след  което  
да се изберат  онези , които  ще бъдат  анализирани  в края  на 
експеримента , като се следва  обратна  последователност , т.е. 
последните  проби  се анализират  първи  (вж. втора  алинея  от 
раздел  1.8.9.5 за насоки  относно  стабилността  на пробите  по 
време  на съхраняването ). ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1337
 
1.8.9.2.  Брой  колби  и проби  
Трябва  да разполагате  с достатъчен  брой  колби  за изпитване , за 
да осигурите : 
— колби  за изпитване ; най-малко  по две колби  за всяка  конце­  
нтрация  от изпитваното  вещество  (за предпочитане  е най- 
малко  3) или няколко  колби  за изпитване  за всяка  конце­  
нтрация , в случай  че се вземат  цели  колби  при всяко  
вземане  на проби  (обозначение  F T ); 
— колби  за изпитване  за изчисляване  на тегловния  баланс ; най- 
малко  по две колби  за всяка  концентрация  от изпитваното  
вещество  (обозначение  F M ); 
— празна  проба , без изпитвано  вещество ; най-малко  една  
празна  колба  за изпитване , съдържаща  само  вода  за 
изпитване  (обозначение  F B ); 
— референтен  контрол ; две колби  с референтното  вещество  
(напр . анилин  или натриев  бензоат , при 10 μg/l) (обозначение  
F C ). Целта  на референтния  контрол  е да се потвърди  
минимална  микробиална  активност . Ако е удобно , може  да 
бъде  използвано  радиомаркирано  референтно  вещество , 
също  и когато  разграждането  на изпитваното  вещество  се 
контролира  чрез химични  анализи ; 
— стерилен  контрол ; една  или две колби , съдържащи  
стерилизирана  вода  за изпитване  за изследване  на 
възможното  абиотично  разграждане  или друго  небиологично  
отстраняване  на изпитваното  веществото  (обозначение  F S ). 
Биологичната  активност  може  да бъде  прекъсната  с 
автоклавна  обработка  (121 °C; 20 мин.) на водата  за 
изпитване  или чрез добавяне  на токсично  вещество  (напр . 
натриев  азид  (NaN  3 ) 10—20 g/l, живачен  хлорид  (HgCl  2 ) 
100 mg/l или формалин  100 mg/l), както  и чрез облъчване  с 
гама  лъчи . Ако се използва  HgCl  2 , той трябва  да бъде  
изхвърлен  като токсичен  отпадък . При вода , към която  е 
добавено  голямо  количество  утайка , не е лесно  да се 
постигнат  стерилни  условия ; в този случай  се препоръчва  
повторна  автоклавна  обработка  (напр . трикратна ). Трябва  
да се вземе  под внимание , че сорбционните  характеристики  
на утайката  могат  да бъдат  променени  от автоклавната  
обработка ; 
— контрол  на разтворителя , със съдържание  на вода  за 
изпитване  и вода  за изпитване  с примес  на референтно  
вещество ; паралелен  анализ  в колби , обработвани  с еднакво  
количество  разтворител  и при използването  на същата  
процедура  като при прилагането  на изпитваното  вещество . 
Целта  е да се изследват  възможните  неблагоприятни  
ефекти  на разтворителя , определяйки  разграждането  на 
референтното  вещество . 
При планирането  на изпитването  изследователят  трябва  да вземе  
под внимание  относителната  важност  на увеличената  реплик­  
атност  при експеримента  спрямо  увеличен  брой  интервали  на 
вземане  на проби . Точният  брой  на необходимите  колби  ще 
зависи  от метода , използван  за измерване  на разграждането  
(вж. трета  алинея  от раздел  1.8.9.1; раздел  1.8.9.4 и 
допълнение  3). ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1338
 
Две подпроби  (напр . аликвотни  части  от 5 ml) трябва  да бъдат  
взети  от всяка  колба  за изпитване  за всеки  интервал  на вземане  
на проба . Ако се използват  няколко  колби  с цел вземане  на цели  
колби , за всеки  интервал  на вземане  на проба  трябва  да се 
използват  минимум  две колби  (вж. първа  алинея  от 
раздел  1.8.9.1).  
1.8.9.3.  Подготовка  на колби  за изпитване  със суспендирана  утайка  [по 
избор ] 
Добавете  в изпитвателните  съдове  за изпитване  необходимите  
количества  вода  и утайка  за изпитване , ако е необходимо  (вж. 
раздел  1.8.5). Подготовката  на колбите  за изпитване  със 
суспендирана  утайка  е същата  като при пелагичното  изпитване  
(вж. раздели  1.8.9.1 и 1.8.9.2). За предпочитане  е използването  
на серумни  бутилки  или на колби  с подобна  форма . Поставете  
затворените  колби  в хоризонтално  положение  върху  
вибрационен  плот . Както  се подразбира , отворените  колби  за 
немаркирани  с 14 C нелетливи  вещества  трябва  да бъдат  
поставени  в изправено  положение ; в този случай  е препоръч­  
ително  магнитно  разбъркване  и използването  на магнитни  
бъркалки  със стъклено  покритие . Ако е необходимо , аерирайте  
бутилките  за поддържане  на подходящи  аеробни  условия . 
1.8.9.4.  Радиохимични  измервания  
Отделеният  14 CO 2 се измерва  директно  и индиректно  (вж. 
допълнение  3).  14 CO 2 се определя  индиректно  чрез разликата  
между  първоначалната  активност  14 C във вода  за изпитване  
или в суспензия  и общата  остатъчна  активност  в съответното  
време  на вземане  на пробата , измерена  след  подкиселяването  
на пробата  до pH 2—3 и отстраняването  на CO  2 . По този 
начин  неорганичният  въглерод  се отстранява  и измерената  
остатъчната  активност  се обуславя  от органичен  материал . 
Индиректното  определяне  на 14 CO 2 не трябва  да се използва , 
ако в хода  на трансформация  на изпитваното  вещество  се 
формират  основни  летливи  продукти  на трансформация  (вж. 
допълнение  3). По възможност , отделянето  на 14 CO 2 трябва  да 
се измерва  директно  (вж. допълнение  3) при всеки  интервал  на 
вземане  на проба  в най-малко  една  колба  за изпитване ; тази 
процедура  позволява  проверката  както  на тегловния  баланс , 
така и на процеса  на биоразграждане , но е приложима  
единствено  за изпитвания , провеждани  със затворени  колби . 
Ако отделеният  14 CO 2 се измерва  директно  по време  на 
изпитването , трябва  да си осигурите  повече  колби  за тази цел 
в началото  на изпитването . Директното  измерване  на 14 CO 2 се 
препоръчва , ако по време  на трансформацията  на изпитваното  
вещество  се формират  основни  летливи  продукти  на транс­  
формация . При всяка  точка  на измерване  допълнителните  
колби  за изпитване  се подкиселяват  до pH 2—3 и 14 CO 2 се 
събира  във вътрешен  или външен  абсорбер  (вж. допълнение  3). 
По избор  концентрациите  на маркирани  с 14 C изпитвани  
вещества  и основните  продукти  на трансформация  могат  да се 
определят  чрез използването  на радиохроматография  (напр . 
тънкослойна  хроматография , RAD-TLC) или високоефективна  
течна  хроматография  HPLC с радиохимична  детекция . 
По избор  може  да се определи  фазовото  разпределение  на 
остатъчната  радиоактивност  (вж. допълнение  1) и остатъчното  
изпитвано  вещество  и продуктите  на трансформация . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1339
 
В края  на изпитването  трябва  да се определи  тегловният  баланс  
чрез директно  измерване  на 14 CO 2 , използвайки  отделни  колби  
за изпитване , от които  не са вземани  никакви  проби  по време  на 
изпитването  (вж. допълнение  3). 
1.8.9.5.  Специфичен  химичен  анализ  
При наличие  на чувствителен  специфичен  аналитичен  метод  
първоначалното  биоразграждане  може  да бъде  оценено  чрез 
измерване  на общата  остатъчна  концентрация  на изпитваното  
вещество , вместо  използването  на техники  за радиомаркиране . 
Ако се използва  радиомаркирано  вещество  (за измерване  на 
общата  минерализация ), могат  да бъдат  провеждани  паралелно  
специфични  химични  анализи  с цел осигуряване  на полезна  
допълнителна  информация  и проверка  на процедурата . Спец­  
ифични  химични  анализи  могат  да се провеждат  и за 
измерване  на продуктите  на трансформация , получени  по 
време  на разграждането  на изпитваното  вещество , като това се 
препоръчва  по отношение  на вещества , които  се минерализират  
с периоди  на полуразпад  над 60 дни. Концентрацията  на 
изпитваното  вещество  и продуктите  на трансформация  при 
всеки  интервал  на вземане  на проби  трябва  да бъдат  
измервани  и отчитани  (като концентрация  и като процент  от 
използваното  количество ). Обикновено  ще бъдат  идент­  
ифицирани  продукти  на трансформация  ≥ 10 % от използваната  
концентрация  за всеки  интервал  на вземане  на проба , освен  ако 
няма  сериозни  основания  за противното . Продуктите  на транс­  
формация , за които  концентрациите  постоянно  се увеличават  по 
време  на изследването , също  трябва  да бъдат  взети  под 
внимание  при идентифицирането , дори  и техните  концентрации  
да не превишават  горните  граници , тъй като това би могло  да 
очертава  някаква  тенденция . Ако се допуска  възможността  за 
бърза  абиотична  трансформация  на изпитваното  вещество  
(напр . хидролиза ), трябва  да се предвидят  анализи  на продуктите  
на трансформация  при контрол  на стерилността . Нуждата  от 
количествено  определяне  и идентифициране  на продуктите  на 
трансформация  трябва  да се преценява  за всеки  отделен  
случай , като съответните  обосновки  се посочват  в протокола . 
Техниките  за екстракция  с органичен  разтворител  трябва  да се 
прилагат  в съответствие  с инструкциите , описани  в съответната  
аналитична  процедура . 
В случай  че анализът  се извършва  в рамките  на 24 часа (за 
предпочитане ), всички  проби  трябва  да се съхраняват  при 
температура  от 2 до 4 °C и в условия  на херметизация . При 
по-продължителен  период  на съхранение  пробите  трябва  да са 
замразени  до температура  под – 18 °C или третирани  с химични  
консерванти . Подкиселяването  не е препоръчителен  метод  за 
съхраняване  на пробите , тъй като подкиселените  проби  могат  
да са нестабилни . Ако пробите  не се анализират  в рамките  на 
24 часа и подлежат  на по-продължителен  период  на 
съхраняване , трябва  да се проведе  изследване  на устойчивостта  
в условията  на съхранение , за да се установи  стабилността  на 
въпросните  химични  вещества  при съхранение  при температура  
под – 18 °C или при обработка  с химични  консерванти . Ако 
аналитичният  метод  изисква  или екстракция  с разтворител , или 
екстракция  в твърда  фаза , екстракцията  трябва  да се извърши  
веднага  след  вземането  на пробата  или след  запазването  на 
замразената  проба  за максимален  период  от 24 часа. 
В зависимост  от чувствителността  на аналитичния  метод  може  
да се наложи  използването  на по-големи  обеми  проби  от 
посочените  в раздел  1.8.1. Изпитването  може  да бъде  
извършено  лесно  с изпитвани  обеми  от един  литър  в колби  с 
вместимост  от 2—3 литра , което  би позволило  вземането  на 
проби  от около  100 ml.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1340
 
2. ДАННИ  И ДОКЛАДВАНЕ  
2.1. ОБРАБОТКА  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
2.1.1.  Графично  изобразяване  на данните  
Интервалите  на вземане  на пробите  трябва  да се закръглят  на 
цели  часове  (освен  ако веществото  не се разгражда  значително  
за минути  до часове ), но не и на цели  дни. Изобразявайте  
данните  за остатъчната  активност  на изпитваното  вещество  (за 
маркирани  с 14 C вещества ) или за остатъчната  концентрация  (за 
немаркирани  вещества ), спрямо  времето  както  в линейна , така и 
в полулогаритмична  графика  (вж. фигури  1a, 1б). Ако се е 
извършило  разграждане , сравнете  резултатите  от колби  F T с 
тези от колби  F S . Ако резултатите  от колбите  с изпитваното  
вещество  (F  T ) и стерилните  колби  (F  S ) се различават  с по- 
малко  от 10 %, може  да се предположи , че наблюдаваното  
разграждане  е предимно  абиотично . Ако разграждането  в 
колби  F S е по-ниско , данните  могат  да бъдат  използвани  за 
коригиране  на получените  от колби  F T (чрез изваждане ) с цел 
установяване  на степента  на биоразграждане . Когато  по избор  се 
провеждат  анализи  на основни  продукти  на трансформация , 
трябва  да бъдат  представени  графики  на тяхното  формиране  и 
спад  в допълнение  към графичното  изобразяване  на 
намаляването  на изпитваното  вещество . 
Установете  продължителността  на латентния  период  t L от 
кривата  на разграждането  (полулогаритмична  графика ) чрез 
екстраполация  на нейната  линейна  част до нулево  разграждане  
или алтернативно  чрез определяне  на времето  за разграждане  в 
размер  на около  10 % (вж. фигури  1a и 1б). От полулогаритм­  
ичната  графика  установете  скоростната  константа  от първи  
порядък  k и нейната  стандартна  грешка  чрез линейна  регресия  
на ln (остатъчна  активност  14 C или концентрация  на изпитваното  
вещество ) спрямо  времето . Специално  при измерванията  14 C 
използвайте  единствено  данни , принадлежащи  към началната  
линейна  част на кривата  след  приключилата  латентна  фаза  и 
отдайте  предпочитание  на избора  на известно  количество  
представителни  данни , вместо  на голям  обем  несигурни  данни . 
Несигурността  в случая  се определя  от грешки , обусловени  от 
препоръчаното  директно  използване  на измерени  остатъчни  14 C 
активности  (вж. по-долу ). В някои  случаи  би било  уместно  
изчисляването  на две различни  скоростни  константи , ако 
разграждането  се развива  по двуфазен  модел . За тази цел се 
определят  две различни  фази  на кривата  на разграждане . Изчис­  
ленията  на скоростната  константа  k и на периода  на полуразпад  
t ½ = ln2/k трябва  да се извършват  за всяка  отделна  репликатна  
колба , когато  се вземат  подпроби  от една  и съща  колба , или чрез 
използване  на средните  стойности , когато  в рамките  на един  
интервал  на вземане  на проби  се вземат  цели  колби  (вж. 
последната  алинея  от раздел  1.8.9.2). Когато  се използва  
първата  от посочените  процедури , скоростната  константа  и 
периодът  на полуразпад  трябва  да се отчитат  за всяка  отделна  
репликатна  колба  като средна  стойност  със стандартна  грешка . 
В случай  че са били  използвани  високи  концентрации  на 
изпитваното  вещество , кривата  на разграждане  може  значително  
да се отклонява  от права  линия  (полулогаритмична  графика ) и 
кинетиката  от първи  порядък  може  да не е валидна  в този 
случай . В този смисъл  определянето  на периода  на полуразпад  
е безпредметно . Въпреки  това, за ограничен  обем  данни  може  да 
се приложи  кинетика  от първи  порядък  и да се установи  
периодът  на полуразграждане  DT  50 (време  за достигане  на 
разграждане  в размер  на 50 %). Следва  обаче  да се има 
предвид , че продължителността  на разграждане  извън  избрания  
обем  данни  не може  да бъде  прогнозирана  на базата  на пока­  
зателя  DT  50 , който  единствено  описва  избраните  данни . 
Предлага  се широк  набор  от аналитични  инструменти , 
улесняващи  статистическите  изчисления  и апроксимацията  на 
кривите , а използването  на такъв  софтуер  е препоръчително . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1341
 
В случай  на извършване  на специфични  химични  анализи , уста­  
новете  скоростните  константи  и периодите  за първоначалното  
полуразграждане , както  по-горе за общата  минерализация . Ако 
първоначалното  разграждане  е пределният  процес , понякога  
могат  да се използват  базови  точки  от целия  ход на 
разграждането . Това  се дължи  на факта , че измерванията  са 
директни , за разлика  от измерванията  на активността  14 C. 
Ако се използват  маркирани  с 14 C вещества , тегловният  баланс  
трябва  да се изрази  като процент  от използваната  първоначална  
концентрация , най-малкото  в края  на изпитването . 
2.1.2.  Остатъчна  активност  
Когато  маркираната  с 14 C част от дадено  органично  вещество  
бъде  биоразградена , основната  част от 14 C преминава  в 14 CO 2 , 
докато  друга  се използва  за нарастване  на биомасата  и/или за 
синтез  на извънклетъчни  метаболити . По тази причина  пълното  
„максимално “ биоразграждане  на дадено  вещество  не води  
до 100-процентово  преминаване  на въглерода  в неговия  състав  
в 14 CO 2 . Вграденият  в продукти  от биосинтеза  14 C впоследствие  
бавно  се отделя  под формата  на 14 CO 2 в резултат  на „вторична  
минерализация “. По тези причини  графичните  изображения  на 
остатъчната  активност  на органичен  14 C (измерена  след  
отстраняването  на CO  2 ) или на произведения  14 CO 2 спрямо  
времето  ще покаже  „снижаване “ след  приключване  на процеса  
на биоразграждане . Това  усложнява  кинетичното  
интерпретиране  на данните  и за целта  само  началната  част на 
кривата  (след  края  на латентния  период  и преди  достигането  на 
около  50 % от процеса  на разграждане ) трябва  обикновено  да 
бъде  използвана  за установяването  на скоростната  константа  на 
разграждане . Ако изпитваното  вещество  бъде  разградено , 
общата  остатъчна  активност  на органичния  14 C винаги  е по- 
висока  от активността  14 C, свързана  с остатъчното  непроменено  
изпитвано  вещество . Ако изпитваното  вещество  се разгражда  
чрез реакция  от първи  порядък  и една  постоянна  фракция  α се 
минерализира  в CO  2 , началният  наклон  на кривата  на конце­  
нтрация  на 14 C (общ органичен  14 C спрямо  времето ) ще бъде  
α пъти  наклона  на съответната  крива  на концентрацията  на 
изпитваното  вещество  (или по-точно , частта  от изпитваното  
вещество , маркирана  с 14 C). Използвайки  некоригирани  
измервания  на общата  активност  на органичен  14 C, изчислената  
скоростна  константа  на разграждане  ще бъде  стабилна . 
Процедурите  за установяване  на концентрациите  на изпитваното  
вещество  от измерените  радиохимични  активности  на базата  на 
различни  опростяващи  допускания  са описани  в литературата  
(1)(8)(9)(10). Подобни  процедури  са най-лесно  приложими  за 
бързо  разграждащи  се вещества . 
2.2. ИНТЕРПРЕТИРАНЕ  НА РЕЗУЛТАТИТЕ  
Ако бъде  установено , че k зависи  от добавената  концентрация  
(т.е. ако изчислената  k е приблизително  една  и съща  при 
различни  концентрации  на изпитваното  вещество ), може  да се 
предположи , че скоростната  константа  от първи  порядък  е 
представителна  за използваните  условия  на изпитване , т.е. 
изпитваното  вещество , водната  проба  и температурата  на 
изпитване . Чрез  експертна  оценка  трябва  да се определи  до 
каква  степен  резултатите  могат  да бъдат  обобщени  или екстрап­  
олирани  към други  системи . Ако се използва  висока  конце­  
нтрация  на изпитваното  вещество , поради  което  процесът  на 
разграждане  не се развива  по кинетичен  модел  от първи  
порядък , данните  не могат  да бъдат  използвани  за директно  
определяне  на скоростната  константа  от първи  порядък  или на 
съответния  период  на полуразграждане . Въпреки  това, данните , 
получени  от изпитването  при използването  на висока  конце­  
нтрация  на изпитваното  вещество , могат  все още да послужат  
за пресмятането  на степента  на общата  минерализация  и/или 
откриваемост  и количествено  определяне  на продуктите  на 
трансформацията . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1342
 
Ако са известни  скоростите  на други  процеси  на преобразуване , 
различни  от биоразграждането  (напр . хидролиза  или изпарение ), 
те могат  да бъдат  приспаднати  от нетната  скорост  на 
превръщане , констатирана  по време  на изпитването , за да се 
определи  една  приблизителна  скорост  на биоразграждане . 
Данни  за хидролизата  могат  да бъдат  получени  например  от 
стерилните  контроли  или от паралелното  изпитване  при 
използване  на по-висока  концентрация  на изпитваното  вещество . 
Директното  и индиректно  определяне  на 14 CO 2 (раздел  1.8.9.4 и 
допълнение  3) могат  да бъдат  използвани  единствено  за 
измерване  на степента  на минерализация  на изпитваното  
вещество  до CO  2 . За анализирането  на концентрациите  на 
маркирани  с 14 C изпитвани  вещества  и на формирането  на 
основни  продукти  на трансформацията  (вж. трета  алинея  от 
раздел  1.8.9.4) могат  да бъдат  използвани  радиохроматография  
(RAD-TLC) или HPLC. Директното  определяне  на периода  на 
полуразграждане  е възможно  единствено  при липсата  на 
всякакви  основни  продукти  на трансформация  (определени  
като ≥ 10 % от използваното  количество  изпитвано  вещество ). 
В случай  че се наблюдава  наличие  на основни  продукти  на 
трансформация , отговарящи  на горната  дефиниция , трябва  да 
се извърши  подробна  оценка  на данните . Тя може  да включва  
повторно  изпитване  и/или идентификация  на продуктите  на 
трансформация  (вж. първа  алинея  от раздел  1.8.9.5), освен  ако 
пътят  на продуктите  на трансформация  не може  да бъде  
достоверно  описан  на базата  на предходния  опит  (напр . 
информация  за пътя  на разграждане ). Тъй като съотношението  
на въглерода  в изпитваното  вещество , преобразуван  в CO  2 , 
варира  (до голяма  степен  в зависимост  от концентрацията  на 
изпитваното  вещество  и на други  налични  субстрати , от 
условията  на изпитване  и от микробиалната  среда ), това 
изпитване  не позволява  директно  определяне  на пълното  
биоразграждане , както  при изпитването  за отмиране  на DOC; 
но резултатът  е сходен  с този, получен  при респирометрично  
изпитване . По тази причина  степента  на минерализация  ще 
бъде  по-малка  или равна  на минималната  степен  на пълното  
биоразграждане . За да се получи  по-пълна  представа  за 
пълното  биоразграждане  (минерализация  и включване  в 
биомаса ), в края  на изпитването  следва  да се извърши  анализ  
на фазовото  разпределение  на 14 C (вж. допълнение  1). 
Намиращият  се в групата  на частиците  14 C ще се състои  от 
14 C, включен  в бактериална  биомаса , и 14 C, сорбиран  от 
органични  частици . 
2.3. ВАЛИДНОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Ако референтното  вещество  не се е разградило  в рамките  на 
очаквания  интервал  от време  (по отношение  на анилина  и 
натриевия  бензоат  този период  обикновено  е под две 
седмици ), валидността  на изпитването  се подлага  под 
съмнение  и трябва  да бъде  проверена  допълнително  или 
изпитването  трябва  да се повтори  с нова  водна  проба . При 
кръгово  изпитване  по ISO на метода , в което  участваха  седем  
лаборатории  от различни  точки  на Европа , отчетените  скоростни  
константи  на разграждане  по отношение  на анилина  варират  
от 0,3 до 1,7 ден  –1 (средно  0,8 d  –1 ) при температура  20  o C и 
стандартна  грешка  ± 0,4 d  –1 (t ½ = 0,9 дни). Установените  
латентни  периоди  варират  от 1 до 7 дни. В изследваните  води  
е установено  наличие  на бактериална  биомаса , съответстваща  на 
103—104 колонообразуващи  единици  (CFU)/ml. Скоростите  на 
разграждане  в богатите  на хранителни  вещества  
средноевропейски  води  са по-високи  в северните  олиготрофни  
води , което  би могло  да се дължи  на различния  трофичен  статус  
или на предходен  контакт  с химични  вещества . 
Общото  възстановяване  (тегловен  баланс ) в края  на 
експеримента  трябва  да е между  90 % и 110 % за радио­  
маркираните  вещества , докато  първоначалното  възстановяване  
в началото  на експеримента  трябва  да е между  70 % и 110 % 
за немаркираните  вещества . При все това, посочените  диапазони  
трябва  да бъдат  възприемани  като целеви  и не трябва  да се 
използват  като критерии  за приемане  на изпитването . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1343
 
3. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Видът  на изследването  (пелагично  изпитване  или изпитване  със 
суспендирани  утайки ) трябва  да бъде  ясно  посочен  в протокола  
от изпитването , който  трябва  също  така да съдържа  следната  
задължителна  информация : 
Изпитвано  вещество  и референтно  вещество /вещества : 
— тривиални  наименования , химични  наименования  (препоръч­  
ително  е използването  на наименованията  по IUPAC и/или 
CAS), CAS номера , структурни  формули  (показващи  разп­  
оложението  на 14 C в случай  на използване  на радио­  
маркирани  вещества ) и съответните  физикохимични  
свойства  на изпитваното  вещество  и на референтното  
вещество  (вж. раздели  1.5 и 1.6);  
— химични  наименования , CAS номера , структурни  формули  
(показващи  разположението  на 14 C в случай  на използване  
на радиомаркирани  вещества ) и съответните  физикохимични  
свойства  на вещества , използвани  като стандарти  за идент­  
ифициране  и количествено  определяне  на продуктите  на 
трансформация ; 
— чистота  (примеси ) на изпитваните  вещества  и на референтни  
вещества ; 
— радиохимична  чистота  на маркираните  реактиви  и спец­  
ифична  активност  (където  е уместно ). 
Повърхностни  води : 
Трябва  да бъде  предоставена  следната  задължителна  
информация  за взетата  водна  проба : 
— местоположение  и описание  на мястото  на вземане  на 
пробата , включително  (ако е възможно ) история  на 
замърсяване ; 
— дата и час на вземане  на пробата ; 
— хранителни  вещества  (общ N, амониеви  радикали , нитрити , 
нитрати , общ P, разтворен  ортофосфат ); 
— дълбочина  на вземане  на пробата ; 
— външен  вид на пробата  (напр . цвят  и мътност ); 
— DOC и TOC;  
— BOD;  
— температура  и pH на мястото  и към момента  на вземане  на 
пробата ; 
— окислително -редукционен  потенциал  (задължително  само  ако 
аеробните  условия  не са очевидни ); 
— соленост  или проводимост  (в случай  на морска  вода  и солена  
вода ); 
— суспендирани  неразтворени  вещества  (при мътност  на 
пробата ); 
— всякаква  друга  подходяща  информация  за мястото  на 
вземане  на пробата  към момента  на вземането  ѝ (напр . 
актуална  или предходна  информация  за водните  количества  
на реките  или на морските  течения , основни  зауствания  в 
близките  околности  и видове  зауствания , климатични  
условия  преди  момента  на вземане  на пробата ); 
и по избор : 
— микробиална  биомаса  (напр . директно  отчитане  на акридин  
оранж  или колонообразуващи  единици ); ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1344
 
— неорганичен  въглерод ; 
— концентрация  на хлорофил -a като специфичен  показател  за 
биомаса  от водорасли . 
В допълнение  към това в случай  на извършване  на изпитване  
със суспендирани  утайки  трябва  да бъде  представена  следната  
информация  за утайките : 
— дълбочина  на вземане  на проби  от утайки ; 
— външен  вид на утайките  (оцветени , мътни , тинести  или песъ­  
чливи ); 
— текстура  (напр . процент  едър  пясък , фин пясък , тиня  
и глина ) 
— сухо  тегло  на суспендираните  неразтворени  вещества  в g/l, 
концентрация  на TOC или загуба  на тегло  при горене  като 
показател  за измерване  на съдържанието  на органично  
вещество ; 
— pH  
— окислително -редукционен  потенциал  (задължително  само  ако 
аеробните  условия  не са очевидни ). 
Условия  на изпитване : 
— период  между  вземането  на пробата  и използването  ѝ за 
лабораторното  изпитване , съхранение  и предварителна  
обработка  на пробата , дати  на извършване  на изследванията ; 
— количество  на използваното  изпитвано  вещество , изпитвана  
концентрация  и референтно  вещество ; 
— метод  за прилагане  на изпитваното  вещество , включително  и 
употребата  на всякакви  разтворители ; 
— обем  на използваната  повърхностна  вода  и на утайките  (в 
случай  на употребата  на такива ) и обем  на взетата  за 
анализ  проба  за всеки  отделен  интервал ; 
— описание  на използваната  система  на изпитване . 
Ако изпитването  не се провежда  на тъмно , трябва  да се 
предостави  информация  за условията  на „слабо  осветление “: 
— информация  за метода /методите , използвани  за установяване  
на стерилен  контрол  (напр . температура , време  и брой  
автоклавни  обработки ); 
— температура  на инкубиране ; 
— информация  за аналитичните  техники  и методи , използвани  
за радиохимични  измервания  и за проверка  на тегловния  
баланс  и за измервания  на фазовото  разпределение  (ако се 
провеждат  такива ). 
— брой  на репликатите . 
Резултати : 
— проценти  на възстановяване  (вж. раздел  1.7.1);  
— повторяемост  и чувствителност  на използваните  аналитични  
методи , включително  границата  на откриваемост  (LOD) и 
границата  на количествено  определяне  (LOQ) ( вж. 
раздел  1.7.2);  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1345
 
— всички  измерени  данни  (включително  моментите  на вземане  
на пробите ) и изчислени  величини  в таблична  форма  и криви  
на разграждане ; за всяка  изпитвана  концентрация  и за всяка  
репликатна  колба  трябва  да се отчете  коефициентът  на 
линейна  корелация  за наклона  на логаритмичната  графика , 
установеният  латентен  период  и скоростната  константа  от 
първи  или псевдо  първи  порядък  (по възможност ), както  и 
съответният  период  на полуразграждане  (или периодът  на 
полуразпад  t 50 ); 
— отчитане  на съответните  величини  като средни  стойности  на 
наблюдаваните  резултати  при отделните  репликати , напр . 
дължина  на латентния  период , скоростна  константа  на 
разграждане  и период  на полуразпад  (или t 50 ); 
— категоризиране  на системата  или като приспособена , или 
като неприспособена , съдейки  по вида  на кривата  на 
разграждане  и по евентуалното  влияние  на изпитваната  
концентрация ; 
— резултати  от окончателната  проверка  на тегловния  баланс  и 
резултати  от измерванията  на фазовото  разпределение  (при 
наличие  на такива ); 
— дял на минерализиран  14 C и при използване  на специфични  
анализи , пълна  степен  на първоначално  разграждане ; 
— идентифициране , моларна  концентрация  и процент  на 
използваните  продукти  и основните  продукти  на транс­  
формация  (вж. първа  алинея  от раздел  1.8.9.5), където  е 
уместно ; 
— предложен  път на трансформация , където  е уместно ; 
— обсъждане  на резултатите . 
4. ЛИТЕРАТУРА  
1. OECD TG 309 (2004) Aerobic Mineralisation in surface water 
— Simulation Biodegradation Test  
2. ISO/DIS 14592—1 (1999) Качество  на водите  — оценка  на 
аеробната  биоразградимост  на органични  съединения  при 
ниски  концентрации  — част 1: Серийно  изпитване  в колби  
за разклащане  с повърхностна  вода  или суспензии  
повърхностна  вода /утайка . 
3. Метод  за изпитване  C.23. Аеробна  и анаеробна  транс­  
формация  в почва . 
4. Метод  за изпитване  C.24. Аеробна  и анаеробна  транс­  
формация  във водни  утайки . 
5. ОИСР  (1993). Насоки  за изпитването  на химикали . ОИСР , 
Париж . 
6. ISO 8245 (1999). Качество  на водите  — насоки  за 
определянето  на общия  ограничен  въглерод  (TOC) и на разт­  
ворения  органичен  въглерод  (DOC).  
7. ISO 10634 (1995). Качество  на водите  — насоки  за подг­  
отовката  и обработването  на лошо  водоразтворими  
органични  вещества  за последваща  оценка  на 
биоразградимостта  им във водна  среда . 
8. ОИСР  проект  (2000). Документ  с насоки  за изпитване  за 
токсичност  във водна  среда  на трудни  вещества  и смеси . 
Публикации  за здравословността  и безопасността  на 
околната  среда . Поредица  относно  изпитването  и оценката . 
№ 22 (за публикуване  през лятото  на 2000 г.). ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1346
 
9. Simkins, S. and Alexander, M. (1984). Models for minerali ­
zation kinetics with the variables of substrate concentration 
and population density. Appl. Environ. Microbiol.47, 394—401.  
10. Ingerslev, F. and N. Nyholm. (2000). Shake-flask test for deter ­
mination of biodegradation rates of 14C-labeled chemicals at low concentrations in surface water systems. Ecotoxicol. 
Environ. Saf. 45, 274—283.
 
11. ISO/CD 14592—1 (1999). Доклад  от кръгово  изпитване : 
Качество  на водите  — оценка  на аеробната  биоразградимост  
на органични  съединения  при ниски  концентрации  част 1 — 
доклад  от кръговото  изпитване  от 1998/1999 г. Серийно  
изпитване  в колби  за разклащане  с повърхностна  вода  или 
суспензии  вода /утайка . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1347
 
Допълнение  1 
Фазово  разпределение  на 14 C 
С цел да се провери  процедурата , рутинните  измервания  на остатъчната  
обща  активност  на органичен  14 C (TOA) трябва  да бъдат  допълнени  с 
измервания  на тегловния  баланс , включващи  директно  определяне  на 
отделения  14 CO 2 след  улавянето  му в абсорбер  (вж. допълнение  3). Само  
по себе си, действителното  получаване  на 14 CO 2 представлява  недвусм­  
ислено  доказателство  за биоразграждане  в противовес  на абиотичното  
разграждане  или други  механизми  на преобразуване , като изпарение  и 
сорбция . Допълнителна  полезна  информация , характеризираща  модела  на 
биоразграждане , може  да бъде  получена  от измерванията  на 
разпределението  на TOA между  разтвореното  състояние  (активност  на разт­  
ворения  органичен  14 C, DOA) и твърдото  състояние  (активност  на орга­  
ничния  14 C под формата  на твърди  частици , POA) след  отделяне  на 
твърдото  вещество  чрез мембранен  филтър  или центрофуга . POA се 
състои  от изпитваното  вещество , абсорбирано  или адсорбирано  от 
микробиална  биомаса  и от други  частици , в допълнение  към въглерода  от 
веществото  на изпитването , използван  за синтез  на нов клетъчен  материал  и 
по този начин  включен  във фракцията  на биомасата  от частици . 
Образуването  на разтворен  органичен  материал  14 C може  да се определи  
като DOA в края  на процеса  на биоразграждане  („платото “ на кривата  на 
разграждане  спрямо  времето ). 
Установете  фазовото  разпределение  на остатъчния  14 C в избрани  проби , 
като филтрирате  пробите  през мембранни  филтри  с диаметри  на отворите  
от 0,22 μm до 0,45 μm и изработени  от материал , който  не адсорбира  
значителни  количества  от изпитваното  вещество  (за целта  биха  могли  да 
се използват  поликарбонатни  филтри ). Ако сорбцията  на изпитваното  
вещество  от филтъра  е прекалено  голяма , за да не бъде  взета  под 
внимание  (това трябва  да се провери  преди  началото  на експеримента ), 
може  да се използва  високоскоростна  центрофуга  (2 000 g; 10 мин.), 
вместо  филтриране . 
Продължете  филтрирането  или центрофугирането  на нефилтрираните  
проби , както  е описано  в допълнение  3. Разтворете  мембранните  филтри  в 
подходящ  сцинтилационен  флуид  и отчетете  резултатите  по нормалната  
процедура , обикновено  като се използва  само  метода  на определяне  на 
съотношение  с външен  еталон  за коригиране  на потискането , или се 
използва  оксидатор  на проби . В случай  че е използвана  центрофуга , 
суспендирайте  отново  пелетата , формирана  от фракцията  на частиците , в 
1—2 ml дестилирана  вода  и прехвърлете  в сцинтилационна  стъкленица . 
След  това промийте  двукратно  с 1 ml дестилирана  вода  и прехвърлете  
водата  от промиването  в стъкленицата . При необходимост  суспензията  
може  да бъде  внесена  в гел с цел извършване  на течно  сцинтилационно  
броене . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1348
 
Допълнение  2 
Полунепрекъсната  процедура  
Може  да се изисква  удължено  инкубиране  до няколко  месеца  с цел постигане  на 
достатъчно  разграждане  на устойчивите  вещества . Обикновено  продължит­  
елността  на изпитването  не надвишава  60 дни, освен  ако характеристиките  на 
оригиналната  водна  проба  не се поддържат  чрез подновяване  на изпитваната  
суспензия . Въпреки  това, периодът  на изпитване  може  да бъде  удължен  до 
максимум  90 дни, без да се подновява  изпитваната  суспензия , ако разграждането  
на изпитваното  вещество  е започнало  в рамките  на първите  60 дни. 
В хода  на продължително  инкубиране  разнородността  на микробиалната  
среда  може  да намалее  поради  различни  механизми  на преобразуване , 
както  и поради  евентуално  изчерпване  на основни  хранителни  вещества  и 
първични  въглеродни  субстрати  във водната  проба . По тази причина  се 
препоръчва  използването  на полунепрекъснато  изпитване  с цел 
достоверното  определяне  на скоростта  на разграждане  при слабо  
разграждащи  се вещества . Тестът  трябва  да бъде  стартиран  с използването  
на полунепрекъсната  процедура , ако, на базата  на предходен  опит , се 
очаква , че за постигането  на 20 % разграждане  на веществото  е 
необходим  инкубационен  период  от три месеца . Алтернативно , нормалното  
серийно  изпитване  може  да бъде  променено  на полунепрекъснато , ако за 
срок  от приблизително  60 дни на изпитване  по сериен  метод  не е пост­  
игнато  никакво  разграждане  на изпитваното  вещество . Когато  бъде  отчетена  
значителна  степен  на разграждане  (напр . > 20 %), полунепрекъсната  
процедура  може  да бъде  преустановена  и изпитването  да продължи  като 
сериен  експеримент . 
При полунепрекъснато  изпитване  на всеки  две седмици  около  една  трета  от 
обема  на изпитваната  суспензия  се заменя  с прясно  взета  вода , като 
изпитваното  вещество  се добавя  към първоначалната  концентрация . Анал­  
огично , в случай  на извършване  на незадължителното  изпитване  със 
суспендирани  утайки  към подновяващата  вода  към първоначалната  конце­  
нтрация  се добавя  утайка  (между  0,01 и 1 g/l). При извършване  на 
изпитването  със суспендирани  неразтворени  вещества  от утайки  е важно  
да се поддържа  напълно  суспендирана  система  и по време  на подновяването  
на водата , както  и периодът  на престой  да бъде  идентичен  за неразт­  
ворените  вещества  и за водата , тъй като в противен  случай  желаното  напо­  
добяване  на хомогенна  водна  система  без отделни  фази  може  да бъде  
нарушено . Поради  тези причини  при използване  на полунепрекъсната  
процедура  се предпочита  първоначалната  концентрация  на суспендирани  
утайки  да бъде  в по-ниската  част на определения  диапазон . 
Препоръчаното  добавяне  на изпитвано  вещество  означава , че първоначалната  
концентрация  на изпитваното  вещество  не е превишена  от частичното  
подновяване  на изпитваната  суспензия , следователно  приспособяването , 
което  често  се наблюдава  при високи  концентрации  на изпитвано  вещество , 
се предотвратява . Поради  факта , че процедурата  обхваща  както  повторна  
инокулация , така и компенсация  на изчерпаните  хранителни  вещества  и 
първични  субстрати , първоначалното  микробиално  разнообразие  се възста­  
новява  и продължителността  на извършване  на изпитването  може  да бъде  
удължена  практически  до безкрайност . Когато  се използва  полунепрекъсната  
процедура , е важно  да се отбележи , че остатъчната  концентрация  на 
изпитваното  вещество  трябва  да бъде  коригирана  по отношение  на колич­  
ествата  изпитвано  вещество , които  се добавят  и отстраняват  при всяко  едно  
подновяване . Концентрацията  на общото  изпитвано  вещество  и тази на разт­  
вореното  вещество  могат  да бъдат  използвани  взаимозаменяемо  по отношение  
на съединения , които  имат  незначителна  абсорбционна  способност . 
Абсорбцията  е незначителна  (< 5 %) при определени  условия  
(0,1—1 g неразтворени  вещества /l) за вещества  с log K  ow < 3 (приложимо  за 
неутрални , липофилни  съединения ). Това  се илюстрира  от следното  примерно  
изчисление : 0,1 g/l неразтворени  вещества  съответства  приблизително  на 
10 mg въглерод  на литър  (въглеродна  фракция , f C = 0,01). Като  се приеме , че; 
Log K  ow (от изпитваното  вещество ) = 3  
K oc = 0,42 x K  ow 
Коефициент  на разпределение , K d = f C x K  oc , 
след  което  разтворената  част от общата  концентрация  (C-вода  
(C w )/C-общо  (C  t ) е: 
C w /C t = 1/(1 + K  d x SS) = 1(1 + K  oc x f C x SS) = 1/(1 + 0,42 x 103 x 0,01 x 0,1 x 
10 –3 ) = 0,999  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1349
 
Допълнение  3 
Определяне  на 14 CO  2 
Индиректно  определяне  на 14 CO  2 
При рутинните  измервания  индиректният  метод  обикновено  е най-бърз  и 
най-прецизен , в случай  че изпитваното  вещество  е нелетливо  и не се 
преобразува  в летлив  продукт  на трансформация . Просто  прехвърлете  
нефилтрираните  проби  (напр . количество  от 5 ml) в сцинтилационните  
стъкленици . Първоначалната  нормална  активност  в пробите  е 
5 000—10 000 dpm (80— 170 Bq), а минималната  първоначална  активност  
е около  1 000 dpm. CO  2 следва  да бъде  отстранен  след  подкиселяване  до 
pH 2—3 с 1—2 капки  концентрирана  H 3 PO 4 или HCl. Отстраняването  на 
CO 2 следва  да се извърши  чрез пропускане  на въздух  за около  
половин —един  час. Друга  възможност  е стъклените  съдове  да бъдат  
разклатени  силно  за около  1—2 часа (например  върху  вибрационен  плот  
за микроплата ) или да бъдат  подложени  на по-леко  разклащане  в продъ­  
лжение  на една  нощ. Ефикасността  на способа  за отстраняване  на CO  2 
трябва  да бъде  проверена  (чрез удължаване  на периода  на аерация  или на 
разклащане ). След  това трябва  да бъде  добавена  сцинтилационна  течност , 
подходяща  за отчитане  на водни  проби , като пробата  бъде  хомогенизирана  
чрез вихров  миксер , а радиоактивността , да бъде  определена  посредством  
течно  сцинтилационно  броене , като се извади  фоновата  активност , уста­  
новена  в празните  проби  за изпитване  (F  B ). Освен  ако водата  за 
изпитване  не е силно  оцветена  или не съдържа  висока  концентрация  на 
частици , пробите  обикновено  ще покажат  еднородно  потискане  и ще 
бъдат  достатъчни  за извършването  на корекции  на потискането  при 
използването  на външен  еталон . Ако водата  за изпитване  е силно  
оцветена , може  да се наложи  корекция  на потискането  чрез добавяне  на 
вътрешен  еталон . Ако концентрацията  на частиците  е висока , може  да е 
невъзможно  получаването  на хомогенен  разтвор  или гел, или пък 
разликите  в потискането  между  пробите  може  да са големи . В този 
случай  може  да бъде  използван  описаният  по-долу  метод  по отношение  
на изпитвани  суспензии . Ако изпитването  се провежда  като изпитване  със 
суспендирани  утайки , измерването  на 14 CO 2 може  да се извърши  
индиректно  чрез вземането  на хомогенна  проба  от водата  за изпитване /­ 
суспензия  в размер  на 10 ml и разделянето  на фазите  чрез центрофугиране  
при подходяща  скорост  (напр . 40 000 m/s  2 в продължение  15 мин.). След  
това водната  фаза  трябва  да бъде  обработена  както  е описано  по-горе. 
Активността  на 14 C под формата  на твърди  частици  (POA) трябва  да се 
определи  чрез повторно  суспендиране  на утайката  в малко  количество  дест­  
илирана  вода , прехвърляне  в сцинтилационни  стъкленици  и добавяне  на 
сцинтилационна  течност  с цел образуване  на гел (за целта  се предлагат  
специални  сцинтилационни  течности ). В зависимост  от характера  на 
частиците  (напр . тяхното  съдържание  на органични  вещества ), може  да се 
приложи  изгниване  на пробата  в продължение  на една  нощ с помощта  на 
тъканен  солюбилизатор  и след  това се извърши  хомогенизиране  чрез вихров  
миксер  преди  добавянето  на сцинтилационна  течност . Алтернативно , POA 
може  да се определи  чрез горене  при излишък  на кислород  чрез 
използването  на оксидатор  на проби . При отчитането  трябва  винаги  да се 
вземат  под внимание  вътрешните  стандарти  и е възможно  да се наложи  
извършването  на корекции  на потискането , като в допълнение  се използва  
вътрешен  стандарт  за всяка  отделна  проба . 
Директно  определяне  на 14 CO  2 
Ако отделеният  14 CO 2 се измерва  директно , това трябва  да бъде  извършвано  
чрез осигуряване  на повече  колби  в началото  на изпитването , зареждане  на 
колбите  за изпитване  във всяка  точка  на измерване , чрез подкиселяване  до 
pH 2—3 и събиране  на 14 CO 2 във вътрешен  (поставен  във всяка  колба  в 
началото  на изпитването ) или външен  абсорбер . Като  абсорбционно  
средство  може  да бъде  използвана  или основа  (напр . 1 N разтвор  на 
NaOH, или кубче  NaOH), етаноламин  или базирано  на етаноламин  
вещество , както  и предлагани  в търговската  мрежа  абсорбанти . При 
директното  измерване  на 14 CO 2 колбите  трябва  да бъдат  затворени , 
например  с прегради  от бутилов  каучук . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1350
 
Фигура  1а 
Пример  за аритметично  графично  изобразяване  (остатъчна  активност  спрямо  времето )
 
Фигура  1б 
Пример  за полулогаритмично  графично  изобразяване  (ln остатъчна  активност  спрямо  
времето )
 ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1351
 
B.26.  ИЗПИТВАНЕ  ПОТИСКАНЕТО  НА РАСТЕЖА  НА ВИДА  
LEMNA  
1. МЕТОД  
Настоящият  метод  е еквивалентен  на ОИСР  TG 221 (2006) (1). 
Съществува  широко  съгласие  между  институциите  на ЕС, че 
изпитването  Lemna е подходяща  алтернатива  на изпитването  с 
водорасли  за силно  оцветени  вещества  (2)(3).  
1.1. ВЪВЕДЕНИЕ  
Настоящият  метод  за изпитване  е предназначен  за оценяване  на 
токсичността  на вещества  по отношение  на сладководни  
растения  от вида  Lemna  (водна  леща ). Той се базира  на 
съществуващите  насоки  (4)(5)(6)(7)(8)(9), но включва  и модиф­  
икации  на тези методи  с цел да бъдат  отразени  най-скорошните  
научни  изследвания  и обсъждането  на редица  ключови  въпроси . 
Предложеният  метод  е валидиран  чрез международно  кръгово  
изпитване  (10).  
Настоящият  метод  за изпитване  описва  изпитване  за токсичност  
с използване  на Lemna gibba  и Lemna minor , като и двата  вида  са 
били  пространно  изследвани  и са предмет  на посочените  по-горе 
стандарти . Таксономията  на вида  Lemna  е трудна , тъй като е 
усложнена  от съществуването  на широк  кръг  от фенотипове . 
Въпреки  че за Lemna  може  да възникне  генетична  изменчивост  
като реакция  на токсични  вещества , към момента  няма  дост­  
атъчно  данни  относно  този източник  на изменчивост , за да 
бъде  препоръчан  специфичен  клонинг , който  да бъде  
използван  с настоящия  метод  за изпитване . Следва  да се 
отбележи , че изпитването  не е проведено  при пълно  отсъствие  
на чужди  организми , но по време  на процедурата  за изпитване  
се предприемат  поетапни  стъпки  за поддържане  на минимално  
замърсяване  с други  организми . 
Описани  са подробности  от изпитването  с обновяване  (полуст­  
атично  или проточно ) на изпитвания  разтвор  и без обновяване  
(статично ) на изпитвания  разтвор . В зависимост  от целите  на 
изпитването  и регулаторните  изисквания  се препоръчва  да се 
обмисли  прилагането  на полустатичния  метод  и на проточния  
метод , например  за вещества , които  бързо  се губят  от разтвора  в 
резултат  на изпаряване , фоторазграждане , утаяване  или 
биоразграждане . Допълнителни  насоки  са дадени  в (11).  
1.2. ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
За целите  на настоящия  метод  на изпитване  са използвани  
следните  определения  и съкращения : 
Биомаса : сухото  тегло  на живите  организми , съдържащи  се в 
една  популация . В настоящото  изпитване  заместителите  на 
биомасата , като количеството  листовидни  тела или площта  на 
листовидните  тела обикновено  са измерени  и поради  това 
използването  на термина  „биомаса “ се отнася  също  и за 
измерванията  на заместителите . 
Хлороза : пожълтяване  на тъканта  на листовидните  тела. 
Клонинг : организъм  или клетка , възникнал  от единствен  
индивид  чрез безполово  възпроизвеждане . Следователно , 
индивидите  от един  и същи  клонинг  са генетично  идентични . 
Колония : означава  съвкупност  от майчини  и дъщерни  лист­  
овидни  тела (обикновено  от 2 до 4), закрепени  един  към друг . 
Понякога  се посочва  като растение . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1352
 
EC x : концентрацията  на изпитваното  вещество , разтворено  в 
средата  на изпитване , която  води  до потискане  на растежа  от 
x % (например  50 %) на Lemna в рамките  на определения  
период  на експозиция  (да бъде  изрично  отбелязано , ако има 
отклонение  от пълната  или нормалната  продължителност  на 
изпитването ). С оглед  на еднозначно  обозначаване  на стойността  
на EC, изведена  от скоростта  на растежа  или от добива , 
символът  „E  r C“ се използва  за скоростта  на растежа , а „E  y C“ 
се използва  за добива , следван  от използваната  измервана  
променлива , например  E r C (брой  листовидни  тела). 
Проточно  изпитване : изпитване , при което  изпитваните  
разтвори  се подменят  постоянно . 
Листовидно  тяло : отделна /единична  „листообразна “ структура  
на растението  водна  леща . Това  е най-малката  единица , т.е. 
годен  за възпроизводство  индивид . 
Издутост : означава  листовидни  тела, чийто  външен  вид е 
изпъкнал  или набъбнал . 
Растеж : нарастване  на измерваната  променлива , например  на 
броя  на листовидните  тела, сухото  тегло , мокрото  тегло  или 
площта  на листовидните  тела през периода  на изпитване . 
Скорост  на растеж  (средна  специфична  скорост  на растеж ): 
логаритмичното  нарастване  на биомасата  през периода  на 
експозиция . 
Най-ниска  концентрация  на наблюдавано  въздействие  
(LOEC) : най-ниската  изпитвана  концентрация , при която  за 
веществото  се наблюдава  статистически  значимо  понижаващо  
въздействие  върху  растежа  (при p < 0,05) в сравнение  с 
контролната  проба , в рамките  на дадено  време  на експозиция . 
При все това, всички  изпитвани  концентрации  над LOEC трябва  
да имат  вредно  въздействие , равно  или по-голямо  от наблюда­  
ваното  при LOEC. Когато  тези две условия  не могат  да бъдат  
удовлетворени , трябва  да се даде  пълно  обяснение  за това как е 
била  избрана  LOEC (и следователно  NOEC).  
Измервани  променливи : всички  видове  променливи , които  се 
измерват  с цел да се изрази  крайната  точка  на изпитването  с 
помощта  на една  или няколко  различни  променливи  на реак­  
цията . При настоящия  метод  измерваните  променливи  са броят  
на листовидните  тела, площта  на листовидните  тела, свежото  
тегло  и сухото  тегло . 
Монокултура : култура  от един  вид растение . 
Некроза : мъртва  (т.е. бледа  или просмукана  с вода ) листна  
тъкан . 
Концентрация  без наблюдавано  въздействие  (NOEC) : 
изпитваната  концентрация , непосредствено  под LOEC.  
Фенотип : наблюдаемите  характеристики  на един  организъм , 
определени  от взаимодействието  на неговите  гени  и неговата  
околна  среда . 
Променливи  на реакцията : променливите  за оценяване  на 
токсичността , изведени  от произволни  измервани  променливи , 
описващи  биомасата , с помощта  на различни  методи  за изчис­  
ление . При настоящия  метод , скоростите  на растежа  и на добива  
са променливи  на реакцията , изведени  от измервани  променливи  
като брой  листовидни  тела, площ  на листовидните  тела, свежо  
тегло  или сухо  тегло . 
Полустатично  (обновяемо ) изпитване : изпитване , при което  
изпитваният  разтвор  периодично  се подменя  на определени  
интервали  по време  на изпитването . 
Статично  изпитване : метод  за изпитване  без обновяване  на 
изпитвания  разтвор  по време  на изпитването . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1353
 
Крайна  точка  на изпитване : описва  общия  показател , който  
ще бъде  изменен  от химикала  за изпитване  по отношение  на 
контролната  проба  като цел на изпитването . При настоящия  
метод  крайната  точка  на изпитването  е потискането  на 
растежа , което  може  да се изрази  чрез различни  променливи  
на реакцията  на базата  на една  или повече  измервани  проме­  
нливи . 
Среда  на изпитване : напълно  синтетичната  среда  на растеж , 
върху  която  растат  изпитваните  растения , когато  са подложени  
на въздействието  на веществото  за изпитване . Веществото  за 
изпитване  обикновено  се разтваря  в средата  на изпитване . 
Добив : стойността  на измервана  променлива , чрез която  се 
изразява  биомасата  в края  на периода  на експозиция  минус  
измерваната  променлива  в началото  на периода  на експозиция . 
1.3. ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
Дадена  е възможност  експоненциално  растящите  растителни  
култури  от вида  Lemna  да растат  като монокултури  при 
различни  концентрации  на изпитваното  вещество  за период  от 
седем  дни. Целта  на изпитването  е да се измерят  количествено  
свързаните  с веществото  въздействия  върху  вегетативния  растеж  
през този период , на базата  на оценки  на избрани  измервани  
променливи . Броят  на листовидните  тела е главната  измервана  
променлива . Най-малко  още една  измервана  променлива  (обща  
площ  на листовидните  тела, сухо  тегло  или свежо  тегло ) също  
се измерва , тъй като някои  вещества  могат  да окажат  много  по- 
голямо  въздействие  върху  други  измервани  променливи , 
отколкото  върху  броя  на листовидните  тела. За количествена  
оценка  на свързани  с веществата  въздействия , растежът  в 
изпитваните  разтвори  се сравнява  с този на контролните  проби  
и се определят  концентрациите , при които  се осъществява  
потискане  на растежа  до определените  x % (например  50 %) и 
се изразяват  като EC  x (например  EC  50 ) 
Крайната  точка  на изпитването  е потискането  на растежа , 
изразено  като логаритмично  нарастване  на измерваната  
променлива  (средна  специфична  скорост  на растеж ) през 
периода  на експозицията . От средните  специфични  скорости  
на растеж , регистрирани  в серия  от изпитвани  разтвори , се 
определя  концентрацията , при която  се осъществява  потискане  
на скоростта  на растежа  до определените  x % (например  50 %) и 
се изразява  като E r C x (например  E r C 50 ). 
Допълнителната  променлива  на растеж , използвана  в настоящия  
метод  на изпитване , е добивът , който  може  да е необходим , за 
да бъдат  изпълнени  специфични  регулаторни  изисквания  в 
някои  държави . Той се определя  като измерваните  променливи  
в края  на периода  на експозиция  минус  измерваните  променливи  
в началото  на периода  на експозиция . От добива , регистриран  в 
серия  от разтвори  на изпитване  се изчислява  концентрацията , 
при която  се осъществява  потискане  на добива  до определените  
x % (например  50 %) и се изразява  като E y C x (например  E y C 50 ). 
В допълнение  концентрацията  с най-ниско  наблюдавано  възде­  
йствие  (LOEC) и концентрацията  с ненаблюдавано  въздействие  
(NOEC) могат  да бъдат  определени  статистически . 
1.4. ИНФОРМАЦИЯ  ОТНОСНО  ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
Следва  да е възможно  използването  на аналитичен  метод  с дост­  
атъчна  чувствителност  за количествено  измерване  на веществото  
в средата  на изпитване . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1354
 
Информацията  относно  изпитваното  вещество , която  може  да 
бъде  полезна  при установяване  на условията  на изпитване , 
включва  структурната  формула , чистотата , водоразтворимостта , 
стабилността  във вода  и на светлина , pK  a , K ow , парното  налягане  
и биоразградимостта . Разтворимостта  във вода  и парното  налягане  
може  да се използват  за изчисляване  на константата  по закона  на 
Хенри , която  ще покаже  дали  са възможни  значителни  загуби  на 
изпитваното  вещество  през периода  на изпитването . Това  ще 
помогне  да се разбере  дали  следва  да се предприемат  определени  
стъпки  за контролиране  на тези загуби . Когато  информацията  за 
разтворимостта  и стабилността  на изпитваното  вещество  е 
несигурна , се препоръчва  те да бъдат  оценени  в условията  на 
изпитване , т.е. среда  на растеж , температура , режим  на 
осветеност , които  ще бъдат  използвани  при изпитването . 
Когато  контролът  върху  pH на средата  на изпитването  е особено  
важен , например  при изпитване  на метали  или вещества , които  
са нестабилни  при хидролизата , се препоръчва  добавянето  на 
буферно  вещество  към хранителната  среда  (вж. първата  алинея  
от раздел  1.7.4). Допълнителни  насоки  относно  изпитвани  
вещества , чиито  физикохимични  свойства  затрудняват  тяхното  
изпитване , са дадени  в (11).  
1.5. РЕФЕРЕНТНО  ВЕЩЕСТВО  
Референтното  вещество  (референтните  вещества ), като например  
3,5-дихлорфенол , използвано  в международното  кръгово  
изпитване  (10), може  да бъде  изпитвано  като средство  за 
проверка  на процедурата  за изпитване . Желателно  е референтното  
вещество  да се изпитва  най-малко  два пъти  годишно  или, когато  
изпитването  се извършва  по-рядко , да се извършва  едновременно  
с определянето  на токсичността  на изпитваното  вещество . 
1.6. ВАЛИДНОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
За да е валидно  изпитването , времето  за удвояване  на лист­  
овидното  тяло  в контролната  проба  трябва  да бъде  по-малко  
от 2,5 дни (60 часа), съответстващо  на седемкратно  увеличение  
за седем  дни и средна  специфична  скорост  на растеж  от 
0,275 d  –1 . Използването  на средата  и на условията  на изпитване , 
описани  в настоящия  метод  за изпитване , позволяват  пост­  
игането  на този критерий  с помощта  на статичен  режим  на 
изпитване  (8). Очаква  се също , че този критерий  е достижим  и 
в условия  на полустатично  и проточно  изпитване . Изчис­  
ляването  на времето  за удвояване  е показано  в раздел  2.1.  
1.7. ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
1.7.1.  Апаратура  
Цялото  оборудване  в контакт  със средата  на изпитване  следва  да 
е направено  от стъкло  или друг  химически  инертен  материал . 
Стъклените  съдове , използвани  за отглеждане  на култури  и за 
изпитване , трябва  да бъдат  почистени  от химични  замърсители , 
които  биха  могли  да проникнат  в средата  на изпитване , както  и 
да бъдат  стерилни . Съдовете  за изпитването  трябва  да са дост­  
атъчно  широки , така че листовидното  тяло  от различни  колонии  
в контролните  съдове  да расте  без припокриване  в края  на 
изпитването . Няма  значение  дали  корените  докосват  дъното  на 
съдовете  за изпитване , но се препоръчва  минимална  дълбочина  
от 20 mm и минимален  обем  от 100 ml за всеки  съд за 
изпитване . Изборът  на съда  за изпитването  не е от решаващо  
значение , при условие  че тези изисквания  са изпълнени . 
Доказано  е, че подходящи  за целта  са стъклени  лабораторни  
чаши , блюда  кристализатори  или стъклени  блюда  на Петри  с 
нужните  размери . Съдовете  за изпитването  трябва  да бъдат  
покрити  с оглед  минимизиране  на изпарението  и на случайното  
замърсяване , като същевременно  се даде  възможност  за 
циркулиране  на въздуха . Подходящите  съдове  за провеждане  
на изпитването  и особено  капаците  трябва  да предотвратяват  
засенчването  или промените  в спектралните  характеристики  на 
светлината . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1355
 
Културите  и съдовете  за изпитването  трябва  да не се съхраняват  
заедно . Това  се постига  най-добре  с използването  на изолирани  
от въздействията  на околната  среда , камери , инкубатори  или 
помещения  за растеж . Необходимо  е осветлението  и 
температурата  да могат  да се контролират  и да се поддържат  
на постоянно  ниво  (вж. раздел  1.7.8).  
1.7.2.  Изпитван  организъм  
Организмът , използван  за настоящото  изпитване , е Lemna gibba  
или Lemna minor . Кратки  описания  на видовете  водна  леща , 
използвани  за изпитване  за токсичност , са дадени  в допълнение  
1. Растителният  материал  може  да бъде  получен  от колекция  от 
култури , от друга  лаборатория  или от полето . Ако са събрани  от 
полето , растенията  следва  да се съхраняват  в култура  в същата  
среда , която  се използва  за изпитването , в течение  на минимум  
осем  седмици  преди  да се използват . Полевите  обекти  за 
събиране  на началните  култури  трябва  да са без явни  
източници  на замърсяване . Ако са получени  от друга  
лаборатория  или от колекция  от култури , те следва  да се 
съхраняват  по същия  начин  в течение  на минимум  три 
седмици . За източника  на растителен  материал , вида  и 
клонинга  (ако е известен ), използвани  в изпитването , трябва  
винаги  да се докладва . 
Трябва  да бъдат  използвани  монокултури , които  нямат  видимо  
замърсяване  с други  организми  като водорасли  и протозоа . 
Здравите  растения  от L. minor  трябва  да се състоят  от 
колонии , включващи  между  два и пет листовидни  тела, докато  
здравите  колонии  на L. gibba  могат  да съдържат  до седем  лист­  
овидни  тела. 
Качеството  и еднородността  на използваните  за изпитването  
растения  оказват  значително  влияние  върху  резултата  от 
изпитването  и поради  това растенията  трябва  да бъдат  
грижливо  подбрани . Трябва  да се използват  млади , 
бързорастящи  растения  без видими  повреди  и обезцветяване  
(хлороза ). Признак  за култури  с добро  качество  е големият  
обхват  на колонии , съставени  от поне  две листовидни  тела. 
Голям  брой  отделни  листовидни  тела е показателен  за 
екологичен  стрес , например  ограничаване  на хранителните  
вещества , като растителен  материал  от такива  култури  не 
трябва  да се използва  за изпитване . 
1.7.3.  Култивиране  
За намаляване  на честотата  за поддръжка  на културата  
(например  когато  не са планирани  изпитвания  с Lemna  за 
известен  период ), културите  трябва  да се съхраняват  при 
намалено  осветление  и температура  (4—10 °C). Подробности  
за култивирането  са дадени  в допълнение  2. Очевидни  знаци  
за замърсяване  с водорасли  или други  организми  изискват  
стерилизация  на повърхността  на подпроба  от листообразните  
тела на Lemna , последвана  от прехвърляне  в прясна  среда  (вж. 
допълнение  2). В такъв  случай  останалата  замърсена  култура  
трябва  да се изхвърли . 
Най-малко  седем  дни преди  изпитването  достатъчно  колонии  се 
прехвърлят  по стерилен  начин  в прясна  стерилна  среда  и се 
култивират  в течение  на 7—10 дни при условията  на изпитването . 
1.7.4.  Среда  на изпитване  
Препоръчват  се различни  среди  за Lemna minor  и за Lemna 
gibba , както  е описано  по-долу . Трябва  внимателно  да се 
прецени  включването  на pH буфер  в средата  на изпитване  
(MOPS (4- морфолинпропанова  сулфонна  киселина , № по CAS: 
1132—61—2; № по EINECS: 214—478—5) в средата  за L. minor  
и NaHCO  3 в средата  за L. gibba ), когато  има предположения , че 
буферът  може  да реагира  с изпитваното  вещество  и да повлияе  
на изразяването  на неговата  токсичност . Средата  на Steinberg 
(12) също  е приемлива , при условие  че критериите  за 
валидност  са изпълнени . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1356
 
За култивиране  и изпитване  с L. minor  се препоръчва  модиф­  
икация  на средата  на растеж  за Lemna  по шведския  стандарт  
(SIS). Съставът  на тази среда  е даден  в допълнение  3. 
Средата  на растеж  20X — AAP, както  е описана  в допълнение  3, 
се препоръчва  за култивиране  и изпитване  с L. gibba . 
Средата  на Steinberg, както  е описана  в допълнение  3, също  е 
подходяща  за L. minor , но би могла  да се използва  и за L. gibba , 
при условие  че са изпълнени  критериите  за валидност . 
1.7.5.  Разтвори  за изпитване  
Разтворите  за изпитване  обикновено  се приготвят  чрез 
разреждане  на изходните  разтвори . Изходният  разтвор  на 
изпитваното  вещество  обикновено  се приготвя  чрез разтваряне  
на веществото  в среда  на растеж . 
Най-високата  изпитвана  концентрация  на изпитваното  вещество  
обикновено  не трябва  да надвишава  разтворимостта  във вода  на 
веществото  при условията  за провеждане  на изпитването . 
Следва  да се отбележи  обаче , че видът  Lemna  плава  на 
повърхността  и може  да бъде  изложен  на въздействието  на 
вещества , които  се събират  на границата  между  водата  и 
въздуха  (например , слабо  разтворими  във вода  или хидрофобни  
вещества  или повърхностно  активни  вещества ). При такива  
обстоятелства  експозицията  ще произтича  от материал , 
различен  от този в разтвора , и изпитваните  концентрации  
могат , в зависимост  от характеристиките  на изпитваното  
вещество , да надвишат  разтворимостта  във вода . За изпитвани  
вещества  с ниска  водоразтворимост  може  да е необходимо  да се 
приготви  концентриран  изходен  разтвор  или емулсия  на 
веществото , като се използва  органичен  разтворител  или 
дисперсант , за да се улесни  добавянето  на точни  количества  
от изпитваното  вещество  към средата  на изпитване  и да се подп­  
омогне  неговото  диспергиране  и разтваряне . Трябва  да се 
положат  всички  усилия , за да се избегне  използването  на 
такива  материали . Не трябва  да има фитотоксичност  в 
резултат  на използването  на спомагателни  разтворители  и 
дисперсанти . Например  обичайно  използваните  разтворители , 
които  не предизвикват  фитотоксичност  при концентрации  
до 100 μl·l –1 , включват  ацетон  и диметил  формамид . Ако се 
използва  разтворител  или дисперсант , трябва  да бъде  отчетена  
неговата  крайна  концентрация  и тя да се поддържа  на 
минимално  ниво  (≤ 100 μl·l –1 ), а всички  третирани  и 
контролни  проби  трябва  да съдържат  еднаква  концентрация  на 
разтворителя  или дисперсанта . Допълнителни  насоки  относно  
използването  на дисперсанти  са дадени  в (11).  
1.7.6.  Изпитвана  и контролна  групи  
Предварителното  познаване  на токсичността  на изпитваното  
вещество  по отношение  на Lemna , например  от изпитване  за 
определяне  на диапазон , ще помогне  при избирането  на 
подходящи  изпитвани  концентрации . В окончателното  
изпитване  за токсичност  обикновено  би следвало  да има най- 
малко  пет изпитвани  концентрации , подредени  в геометрична  
прогресия . За предпочитане  е коефициентът  на разделяне  
между  изпитваните  концентрации  да не надхвърля  3,2, но 
могат  да се използват  и по-големи  стойности , при които  
кривата  „концентрация —реакция “ е полегата . Трябва  да се 
представи  обосновка , ако са използвани  по-малко  от пет конце­  
нтрации . Най-малко  три идентични  проби  трябва  да се използват  
за всяка  от изпитваните  концентрации . 
При задаването  на диапазона  на изпитваните  концентрации  (за 
изпитване  за определяне  на диапазон  и/или за окончателно  
изпитване  за токсичност ), трябва  да се има пред  вид следното : ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1357
 
— за определяне  на EC  x изпитваните  концентрации  трябва  да 
обхващат  стойността  на EC  x , за да се гарантира  подходящо  
доверително  ниво . Например , ако се оценява  EC  50 , най- 
голямата  изпитвана  концентрация  трябва  да е по-голяма  от 
стойността  на EC  50 . Ако стойността  на EC  50 попада  извън  
диапазона  на изпитваните  концентрации , присъединените  
доверителни  интервали  ще бъдат  големи  и правилната  
оценка  за статистическото  съответствие  на модела  може  да 
не е възможна . 
— ако целта  е да се оцени  LOEC/NOEC, най-ниската  изпитвана  
концентрация  трябва  да е достатъчно  ниска , така че растежът  
да не бъде  значително  по-малък  от този на контролната  
проба . В допълнение , най-високата  изпитвана  концентрация  
трябва  да е достатъчно  висока , така че растежът  да бъде  
значително  по-нисък  от този в контролната  проба . Ако 
това не е така, изпитването  ще трябва  да се повтори  с 
използване  на различен  диапазон  за концентрациите  (освен  
ако най-високата  концентрация  е на границата  на разт­  
воримостта  или максимално  изискваната  пределна  конце­  
нтрация , например  100 mg·l  –1 ). 
Всяко  изпитване  трябва  да включва  контролни  проби , състоящи  
се от същата  хранителна  среда , същия  брой  листовидни  тела и 
колонии , същите  условия  на околната  среда  и процедури  както  
при съдовете  за изпитване , но без изпитваното  вещество . Ако се 
използва  спомагателен  разтвор  или дисперсант , трябва  да бъде  
включена  допълнително  контролна  третирана  проба , като 
разтворителят /дисперсантът  трябва  да присъстват  в същата  
концентрация  като тази в съдовете  с изпитваното  вещество . 
Броят  на съдовете  за повторни  контролни  проби  (и съдовете  с 
разтворител , ако е приложимо ) трябва  да е най-малко  равен , а в 
идеалния  случай  да е два пъти  по-голям  от броя  на съдовете , 
използвани  за всяка  изпитвана  концентрация . 
Ако не се изисква  определяне  на NOEC, планът  за изпитването  
може  да бъде  променен , като се увеличи  броят  на конце­  
нтрациите  и се намали  броят  на повторните  проби  за всяка  от 
концентрациите . Но все пак броят  на повторните  контролни  
проби  трябва  да е най-малко  три. 
1.7.7.  Експозиция  
Колониите , състоящи  се от 2 до 4 видими  листовидни  тела, се 
прехвърлят  от инокулираната  култура  и се прехвърлят  на 
принципа  на случайността  в съдовете  за изпитване  при 
стерилни  условия . Всеки  съд за изпитване  трябва  да съдържа  
общо  от 9 до 12 листовидни  тела. Броят  на листовидните  тела 
и колонии  трябва  да е еднакъв  във всеки  съд за изпитване . 
Придобитият  опит  за настоящия  метод  и данните  от кръговото  
изпитване  показват , че използването  на три повторни  проби  от 
една  третирана  проба , като всяка  повторна  проба  съдържа  в 
началото  от 9 до 12 листовидни  тела, е достатъчно  за откриването  
на различията  в растежа  приблизително  от 4 до 7 % на 
потискането , изчислено  чрез скоростта  на растежа  (10 до15 %, 
изчислени  чрез добива ) между  третираните  проби  (10).  
За минимизиране  влиянието  на пространствените  различия  в 
интензитета  на светлината  и температурата  се изисква  схема  за 
случаен  подбор  за разполагане  на съдовете  за изпитване  в 
инкубатора . При извършване  на наблюдения  (или при по-честа  
промяна  на разполагането ) също  се изискват  блокова  схема  или 
промяна  на разполагането  чрез случаен  подбор . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1358
 
Ако предварителното  изпитване  за стабилност  показва , че 
концентрацията  на изпитваното  вещество  не може  да бъде  
поддържана  (т.е. измерената  концентрация  пада  под 80 % от 
първоначално  измерената  концентрация ) по време  на 
изпитването  (7 дни), се препоръчва  полустатичен  режим  на 
изпитване . В този случай  колониите  трябва  да бъдат  
експонирани  в прясно  приготвени  разтвори  за изпитване  и за 
контролни  проби  най-малко  два пъти  по време  на изпитването  
(например , ден 3 и 5). Честотата  на експониране  в прясна  среда  
ще зависи  от стабилността  на изпитваното  вещество ; може  да е 
необходима  по-голяма  честота , за да се поддържа  почти  
постоянна  концентрация  за силно  нестабилни  или летливи  
вещества . При някои  обстоятелства  може  да се изисква  
процедура  с протичане  (11)(13).  
Сценарият  на експозиция  чрез листно  подхранване  на 
растенията  (пръскане ) не е включен  в настоящия  метод  за 
изпитване , вместо  това вж. (14).  
1.7.8.  Инкубационни  условия  
Трябва  постоянно  да се използва  топло  или студено  бяло  
флуоресцентно  осветление , за да се осигури  интензитет  на свет­  
лината , избрана  в диапазона  85—135 μE·m  –2 ·s –1 , когато  се 
измерва  във фотосинтетично  активно  излъчване  (400—700 nm) 
в точки , чието  разстояние  от източника  на светлина  е еднакво  с 
това на листовидни  тела на Lemna  (еквивалентно  на 
6 500—10 000 lux). Разликите  в интензитета  на светлината  и 
избрания  за площта  на изпитването  интензитет  на светлината  
не трябва  да нахвърлят  ± 15 %. Методът  за засичане  и 
измерване  на светлината , особено  видът  на сензора , ще оказват  
влияние  върху  измерваната  стойност . Сферичните  сензори  
(които  реагират  на светлина , излъчвана  от всички  ъгли  над и 
под равнината  на измерване ) и „косинусовите “ сензори  (които  
реагират  на светлината , излъчвана  от всички  ъгли  над равнината  
на измерване ), са за предпочитане  пред  еднопосочните  сензори  
и ще отчитат  по-прецизни  показания  за описания  тук вид 
многоточков  източник  на светлина . 
Температурата  в съдовете  за изпитване  трябва  да бъде  24 ± 2 °C. 
Стойността  на pH на контролната  среда  не трябва  да се 
повишава  с повече  от 1,5 единици  по време  на изпитването . 
Въпреки  това, отклонение  с повече  от 1,5 единици  не прави  
изпитването  невалидно , при условие  че може  да се покаже , че 
критериите  за валидност  са изпълнени . Необходимо  е да се 
обърне  допълнително  внимание  на отклонението  в стойността  
на pH в някои  специални  случаи , например  когато  се изпитват  
нестабилни  вещества  или метали . Вж. (11) за допълнителни  
насоки . 
1.7.9.  Продължителност  
Изпитването  се прекратява  7 дни след  прехвърлянето  на 
растенията  в съдовете  за изпитване . 
1.7.10.  Измервания  и аналитични  определения  
В началото  на изпитването  се преброяват  и записват  лист­  
овидните  тела в съдовете  за изпитване , като се внимава  да 
бъде  гарантирано  отчитането  на подаващите  се, ясно  видими  
листовидни  тела. Броят  на листовидните  тела, които  изглеждат  
нормални  или анормални , следва  да се определи  в началото  на 
изпитването  и най-малко  веднъж  на всеки  3 дни по време  на 
експозицията  (т.е. в най-малко  2 случая  по време  на 7-дневния  
период ), както  и при завършване  на изпитването . Трябва  да 
бъдат  отбелязани  промените  в развитието  на растението , 
например  в размера  на листовидните  тела, външния  вид, 
показания  за некроза , хлороза  или набъбналост , разпадане  на 
колонията  или загуба  на способността  за задържане  върху  
повърхността  на водата , както  и дължината  и външния  вид на 
корените . Трябва  да се отбележат  и значими  характеристики  на 
средата  на изпитване  (например  наличието  на неразтворен  
материал , растеж  на водорасли  в съда  за изпитване ). ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1359
 
В допълнение  към определянето  на броя  на листовидните  тела 
по време  на изпитването , трябва  да се оценят  и въздействията  на 
изпитваното  вещество  върху  една  (или повече ) от следните  
измервани  променливи : 
i) обща  площ  на листовидните  тела, 
ii) сухо  тегло , 
iii) свежо  тегло . 
Общата  площ  на листовидните  тела има предимство , че може  да 
се определи  за всеки  изпитван  и контролен  съд в началото , по 
време  и в края  на изпитването . Сухото  или свежото  тегло  трябва  
да се определят  в началото  на изпитването  от проба  на инокул­  
ативната  култура , която  е образец  на това, което  се използва  за 
начало  на изпитването , както  и в края  на изпитването  с раст­  
ителен  материал  от всеки  съд за изпитване  и всеки  контролен  
съд. Ако не се измерва  площта  на листовидните  тела, за предп­  
очитане  е сухото  пред  свежото  тегло . 
Общата  площ  на листовидните  тела, сухото  тегло  и свежото  
тегло  могат  да бъдат  определени , както  следва : 
i) Обща  площ  на листовидните  тела : Общата  площ  на лист­  
овидните  тела на всички  колонии  може  да се определи  чрез 
анализ  на изображенията . Силуетът  на съда  за изпитване  и 
растенията  могат  да се уловят  с помощта  на видеокамера  
(т.е. чрез поставянето  на съда  върху  светлопроницаема  
кутия ) и полученото  изображение  да се дигитализира . Чрез  
калибриране  с плоски  форми  на известна  площ  след  това 
може  да се определи  общата  площ  на листовидните  тела в 
съда  за изпитване . Трябва  да се вземат  мерки  за изключване  
на интерференцията , предизвикана  от ръба  на съда  за 
изпитване . Алтернативен , но по-трудоемък  подход  е да се 
фотографират  съдовете  за изпитване  и растенията , да се 
изреже  полученият  силует  на колониите  и да се определи  
тяхната  площ  с помощта  на анализатор  на площта  на 
листата  или с милиметрова  хартия . И други  техники  
(например  съотношението  по тегло  на хартията  между  
площта  на силуета  на колониите  и единицата  площ ) може  
също  да са подходящи . 
ii) Сухо  тегло : Всички  колонии  се събират  от всеки  съд за 
изпитване  и се изплакват  с дестилирана  или дейонизирана  
вода . Те се попиват  за отстраняване  на излишната  вода  и 
след  това се изсушават  при 60 °C до постоянно  тегло . 
Всички  части  на корени  трябва  също  да се включат . 
Сухото  тегло  трябва  да бъде  изразено  с точност  най-малко  
0,1 mg.  
iii) Свежо  тегло : Всички  колонии  се прехвърлят  в тръби  от 
предварително  претеглен  полистирол  (или друг  инертен  
материал ) с малки  (1 mm) дупки  в заоблените  долни  части . 
След  това тръбите  се центрофугират  с 3 000 rpm в течение  
на 10 минути  при стайна  температура . Тръбите , които  сега 
съдържат  изсушените  колонии , се измерват  отново  и 
свежото  тегло  се пресмята  чрез изваждането  на теглото  на 
празната  тръба . 
1.7.10.1.  Честота  на измерванията  и аналитичните  определения  
Ако се използва  схема  за статично  изпитване , pH на всяка  
третирана  проба  трябва  да се измери  в началото  и в края  на 
изпитването . Ако се използва  схема  за полустатично  изпитване , 
pH трябва  да се измерва  във всяка  партида  от „свеж “ разтвор  за 
изпитване  преди  всяко  подновяване , както  и в съответните  
„изчерпани “ разтвори . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1360
 
Интензитетът  на светлината  трябва  да се измерва  във вегет­  
ационната  камера , в инкубатора  или помещението  в точки , 
които  са на разстояние  от източника  на светлина , което  е 
еднакво  с това на листовидните  тела на Lemna . Измерванията  
трябва  да се извършват  най-малко  веднъж  по време  на 
изпитването . Температурата  на средата  в заместващия  съд, 
който  се държи  при същите  условия  във вегетационната  
камера , инкубатора  или помещението , трябва  да се записва  
най-малко  веднъж  дневно . 
По време  на изпитването  концентрациите  на изпитваното  
вещество  се определят  през подходящи  интервали . При 
статични  изпитвания  минималното  изискване  е концентрациите  
да се определят  в началото  и края  на изпитването . 
При полустатични  изпитвания , при които  концентрацията  на 
изпитваното  вещество  не се очаква  да остане  в рамките  на 
± 20 % от номиналната  концентрация , е необходимо  да се 
анализират  всички  прясно  приготвени  изпитвани  разтвори  и 
същите  разтвори  при всяко  обновяване  (вж. третата  алинея  от 
раздел  1.7.7). Обаче  при тези изпитвания , при които  измерената  
начална  концентрация  на изпитваното  вещество  не е в рамките  
на ± 20 % от номиналната , но за които  може  да се предоставят  
достатъчно  доказателства , показващи  че началните  конце­  
нтрации  са повторяеми  и стабилни  (т.е. в диапазона  
80—120 % от началната  концентрация ), химичните  определения  
могат  да се извършат  само  за най-високата  и най-ниската  
изпитвана  концентрация . Във всички  случаи  определянето  на 
концентрациите  на изпитваното  вещество  преди  обновяването  
е необходимо  да се извършва  само  за един  повторен  съд за 
всяка  изпитвана  концентрация  (или съдържанието  на съдовете , 
обединени  в пул от повторени  проби ). 
Ако се използва  проточно  изпитване , подходящ  е режим  за 
взимане  на проби , подобен  на описания  при полустатичните  
изпитвания , включително  анализа  в началото , по средата  и в 
края  на изпитването , но измерванията  на „изчерпаните “ 
разтвори  в този случай  не са подходящи . В този тип на 
изпитване  скоростта  на потока  на разреждащото  и изпитваното  
вещество  или изходният  разтвор  на изпитваното  вещество  
трябва  да се проверяват  ежедневно . 
Ако има доказателство , че концентрацията  на веществото , което  
се изпитва , се поддържа  задоволително  в рамките  на ± 20 % от 
номиналната  или измерената  начална  концентрация  през цялото  
време  на изпитването , анализът  на резултатите  може  да се 
базира  на номиналните  или измерените  начални  стойности . 
Ако отклонението  от номиналната  или измерената  начална  
концентрация  е по-голямо  от ± 20 %, анализът  на резултатите  
трябва  да се базира  на средногеометричната  стойност  на конце­  
нтрацията  по време  на експозицията  или на модели , които  
описват  намаляването  на концентрацията  на изпитваното  
вещество  (11).  
1.7.11.  Гранично  изпитване  
При някои  обстоятелства , например  когато  едно  предварително  
изпитване  е показало , че изпитваното  вещество  няма  токсично  
въздействие  при концентрации  до 100 mg·l  –1 , или до неговата  
граница  на разтворимост  в средата  на изпитване  (която  от двете  
стойности  е по-ниска ), може  да се предприеме  гранично  
изпитване , включващо  сравнение  на реакциите  в контролна  
група  и една  група  с третирани  проби  (100 mg·l  –1 или конце­  
нтрация , равна  на границата  на разтворимост ). Настоятелно  се 
препоръчва  това да бъде  подкрепено  с анализ  на концентрацията  
на експозиция . Всички  предходни  условия  на изпитване  и 
критерии  за валидност  се прилагат  и за гранично  изпитване , с 
изключение  на това, че броят  на третираните  повторни  проби  
трябва  да се удвои . Растежът  в контролната  и третираната  група  
може  да се анализира  чрез използване  на статистическо  
изпитване  за сравняване  на средните  стойности , например  t- 
тест на Student.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1361
 
2. ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
2.1. ВРЕМЕ  НА УДВОЯВАНЕ  
За определяне  на времето  за удвояване  (T  d ) на броя  на лист­  
овидните  тела и придържането  към този критерий  за 
валидност  при изследването  (раздел  1.6) се използва  следната  
формула  с данните , получени  от контролните  съдове : 
T d = ln 2/μ 
където  μ е средната  специфична  скорост  на растеж , определена  
според  описанието  в първа  и втора  алинея  от раздел  2.2.1.  
2.2. ПРОМЕНЛИВИ  НА РЕАКЦИЯТА  
Целта  на изпитването  е да се определят  въздействията  на 
изпитваното  вещество  върху  вегетативния  растеж  на Lemna . 
Настоящият  метод  за изпитване  описва  две променливи  на реак­  
цията , тъй като държавите -членки  имат  различни  предпочитания  
и регулаторни  нужди . За да се приемат  резултатите  от 
изпитването  във всички  държави -членки , въздействията  следва  
да се оценяват  с използването  и на двете  променливи  a) и б) на 
реакцията , описани  по-долу . 
a) Средна  специфична  скорост  на растеж : тази променлива  на 
реакцията  се изчислява  на базата  на промените  в логаритмите  
на броя  на листовидните  тела и допълнително  — на базата  на 
промените  в логаритмите  на друг  измерван  параметър  (обща  
площ  на листовидните  тела, сухо  тегло  или свежо  тегло ) с 
течение  на времето  (изразено  в дни) в контролните  проби  и 
във всяка  група  с третирани  проби . Понякога  тя се нарича  
относителна  скорост  на растеж  (15).  
б) Добив : тази променлива  на реакцията  се изчислява  на базата  
на промените  в броя  на листовидните  тела и допълнително  — 
на базата  на промените  в логаритмите  на друг  измерван  
параметър  (обща  площ  на листовидните  тела, сухо  тегло  
или свежо  тегло ) в контролните  проби  и във всяка  група  с 
третирани  проби  до края  на изпитването . 
Следва  да се отбележи , че стойностите  на токсичността , 
изчислени  с помощта  на тези две променливи  на реакцията , не 
са сравними  и тази разлика  трябва  да се разпознава , когато  се 
използват  резултатите  от изпитването . Стойностите  на EC  x , 
базирани  на средната  специфична  скорост  на растеж  (E r C x ), по 
правило  ще бъдат  по-високи  от резултатите , базирани  на добива  
(E y C x ), ако се придържате  към условията  за изпитване  на 
настоящия  метод  за изпитване , което  се дължи  на математическата  
основа  на съответните  подходи . Това  не трябва  да се интерпретира  
като разлика  между  чувствителността  на двете  променливи  на 
растеж , тъй като стойностите  просто  са различни  чисто  математ­  
ически . Концепцията  за средната  специфична  скорост  на растеж  
се основава  на общия  експоненциален  модел  за растежа  на водната  
леща  в неограничени  култури , където  токсичността  се оценява  на 
базата  на въздействието  върху  скоростта  на растежа , без да зависи  
от абсолютното  ниво  на специфичната  скорост  на растеж  на 
контролната  проба , от наклона  на кривата  на концентрация - 
реакция  или продължителността  на изпитването . Противо­  
положно  на това, резултатите , базирани  на променливата  на 
реакцията  за добива , зависят  от всички  тези други  променливи . 
E y C x зависи  от специфичната  скорост  на растеж  на вида  водна  
леща , използван  във всяко  изпитване , както  и от максималната  
специфична  скорост  на растеж , която  може  да варира  между  
видовете  и дори  различните  клонинги . Тази  променлива  на 
реакцията  не следва  да се използва  за сравняване  на чувствит­  
елността  към токсични  вещества  между  видовете  водна  леща  и 
дори  различните  клонинги . Докато  използването  на средната  
специфична  скорост  на растеж  за оценяване  на токсичността  е за 
предпочитане  от научна  гледна  точка , оценките  за токсичността , 
базирани  на добива , които  също  са включени  в настоящия  метод  
за изпитване , удовлетворяват  действащите  регулаторни  изис­  
квания  в някои  държави . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1362
 
Оценките  за токсичността  трябва  да са базирани  на броя  на 
листовидните  тела и на още една  допълнителна  измервана  
променлива  (обща  площ  на листовидните  тела, сухо  тегло  или 
свежо  тегло ), тъй като някои  вещества  могат  да въздействат  на 
други  измервани  променливи  много  повече , отколкото  броят  на 
листовидните  тела. Това  въздействие  не може  да бъде  открито  
само  чрез изчисляване  на броя  на листовидните  тела. 
Броят  листовидни  тела, както  и всяка  друга  записана  измервана  
променлива , т.е. общата  площ  на листовидните  тела, сухото  
тегло  или свежото  тегло , се табулират  заедно  с концентрациите  
на изпитваното  вещество  за всеки  измерван  случай . 
Последващият  анализ  на данни , например  оценяването  на 
LOEC, NOEC или EC  x , трябва  да се основава  на стойностите  
за отделните  повторни  проби , а не на изчислените  средни  
стойности  за група  третирани  проби . 
2.2.1.  Средна  специфична  скорост  на растеж  
Средната  специфична  скорост  на растеж  за определен  период  се 
изчислява  като логаритмичното  нарастване  в променливите  за 
растеж  — брой  на листовидните  тела и още една  измервана  
стойност  (обща  площ  на листовидните  тела, сухо  тегло  или 
свежо  тегло ) — като се използва  формулата , дадена  по-долу , 
за всяка  повторна  проба  на контролната  проба  и третираните  
проби : 
μ i—j ¼ ln ðN j Þ – ln ðN i Þ 
t 
където : 
— μ i—j : средна  специфична  скорост  на растеж  за времето  от i 
до j 
— N  i : измервана  променлива  в съда  за изпитване  или в 
контролния  съд в момента  от време  i 
— N  j : измервана  променлива  в съда  за изпитване  или в 
контролния  съд в момента  от време  j 
— t: времеви  интервал  от i до j 
За всяка  група  от третирани  проби  и контролна  група  да се 
изчисли  средната  стойност  за скоростта  на растеж  заедно  с 
оценки  на променливостта . 
Средната  специфична  скорост  на растеж  трябва  да се изчисли  за 
целия  период  на изпитване  (времето  „i“ в горната  формула  е 
началото  на изпитването , а времето  „j“ е краят  на изпитването ). 
За всяка  изпитвана  и контролна  концентрация  да се изчисли  
средната  стойност  на скоростта  за растеж  заедно  с оценки  на 
променливостта . Допълнително  трябва  да се оцени  скоростта  на 
растеж  сектор  по сектор  с цел да се оценят  въздействията  на 
изпитваното  вещество , които  възникват  в периода  на експозиция  
(например  чрез проверка  на логаритмично  преобразуваните  
криви  на растежа ). Значителните  различия  между  скоростта  на 
растеж  по сектори  и средната  скорост  на растеж  показват  
отклонение  от постоянния  експоненциален  растеж  и че има 
основание  за внимателна  проверка  на кривите  на растежа . В 
този случай  консервативният  подход  ще бъде  да се сравнят  
специфичните  скорости  на растежа  на третираните  култури  в 
течение  на времевия  интервал  на максимално  потискане  с тези 
за контролните  проби  за същия  времеви  интервал . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1363
 
Процентът  на потискане  на скоростта  на растежа  (I r ) тогава  
може  да се изчисли  за всяка  изпитвана  концентрация  (група  от 
третирани  проби ) съгласно  следната  формула : 
% I r ¼ ðμ C – μ T Þ 
μ C Ü 100  
където : 
— % I  r : процентното  потискане  на средната  специфична  
скорост  на растеж  
— μ C : средната  стойност  за μ в контролната  проба  
— μ T : средната  стойност  за μ в групата  от третирани  проби  
2.2.2.  Добив  
Въздействията  върху  добива  се определят  на базата  на две 
измервани  променливи , броя  на листовидните  тела и още една  
измервана  променлива  (обща  площ  на листовидните  тела, сухо  
тегло  или свежо  тегло ), които  присъстват  във всеки  съд за 
изпитване  в началото  и в края  на изпитването . За сухото  тегло  
или свежото  тегло  началната  биомаса  се определя  на базата  на 
проба  от листовидни  тела, взета  от същата  проба , използвана  за 
инокулацията  на съдовете  за изпитване  (вж. втората  алинея  от 
раздел  1.7.3). За всяка  изпитвана  концентрация  и контролна  
концентрация  да се изчисли  средната  стойност  на добива  
заедно  с оценки  на променливостта . Средното  процентно  
потискане  на добива  (% I  y ) може  да се изчисли  за всяка  група  
от третирани  проби , както  следва : 
% I y ¼ ðb C – b T Þ 
b C Ü 100  
където : 
— % I  y : процентното  намаление  на добива  
— b  C : крайната  биомаса  минус  началната  биомаса  за 
контролната  група  
— b  T : крайната  биомаса  минус  началната  биомаса  в групата  
от третирани  проби  
2.2.3.  Построяване  на кривите  „концентрация —реакция “ 
Трябва  да се построят  кривите  концентрация —реакция , които  
дават  съотношението  на средното  процентно  потискане  на 
променливата  на реакцията  (I  r или I y , изчислени  както  е 
показано  в последната  алинея  от раздел  2.2.1 или в 
раздел  2.2.2) и логаритъма  на концентрацията  на изпитваното  
вещество . 
2.2.4.  Оценяване  на EC  x 
Оценките  на EC  x (например  EC  50 ) следва  да се базират  както  на 
средната  специфична  скорост  на растеж  (E r C x ), така и на добива  
(E y C x ), като всяка  от тях от своя  страна  се основава  на броя  на 
листовидните  тела и една  допълнителна  измервана  променлива  
(обща  площ  на листовидните  тела, сухо  тегло  или свежо  тегло ). 
Това  е така, тъй като има изпитвани  вещества , който  оказват  
различно  въздействие  върху  броя  на листовидните  тела и 
други  измервани  променливи . Следователно  исканите  
параметри  за токсичност  са четирите  стойности  на EC  x за 
всяко  изчислено  ниво  x на потискане  на растежа : E  r C x (брой  
на листовидните  тела); E  r C x (обща  площ  на листовидните  тела, 
сухо  тегло  или свежо  тегло ); E  y C x (брой  на листовидните  тела); 
и E y C x (обща  площ  на листовидните  тела, сухо  тегло  или свежо  
тегло ). ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1364
 
2.3. СТАТИСТИЧЕСКИ  ПРОЦЕДУРИ  
Целта  е да се получи  количествено  съотношение  конце­  
нтрация —реакция  чрез регресивен  анализ . Може  да се 
използва  тегловна  линейна  регресия  след  извършване  на 
линеаризираща  трансформация  на данните  от ответната  
реакция  — например  в единици  пробит  или логит  или Weibull 
(16), но предпочитаните  техники  са тези на нелинейната  
регресия , които  по-добре  обработват  неизбежните  неравно­  
мерности  и отклонения  от гладките  разпределения . При 
приближаване  на нулево  или пълно  потискане  подобни  неравно­  
мерности  може  да бъдат  увеличени  от трансформацията , като по 
този начин  пречат  на анализа  (16). Трябва  да се отбележи , че 
стандартните  методи  за анализ  с помощта  на преобразования  на 
пробит , логит  или Weibull са предназначени  за използване  за 
количествени  данни  (например  смъртност  или оцеляване ) и 
трябва  да се модифицират , за да се приспособят  към данните  
за скоростта  на растежа  или добива . Специфични  процедури  за 
определяне  на стойностите  на EC  x от непрекъснати  данни  могат  
да се намерят  в (17), (18) и (19).  
За анализа  на всяка  от променливите  на реакцията  да се 
използва  съотношението  концентрация —реакция , за да се 
изчислят  точковите  оценки  на стойностите  на EC  x . По 
възможност  трябва  да се определят  95 % доверителни  граници  
за всяка  от оценките . Адекватността  на данните  от реакцията  
спрямо  регресивния  модел  може  да се оцени  графично  или 
статистически . Регресивният  анализ  трябва  да се извърши , като 
се използват  реакциите  на отделните  повторни  проби , а не 
средните  стойности  на група  от третирани  проби . 
Оценките  на EC  50 и доверителните  граници  могат  да се получат  
също  и чрез използване  на линейна  интерполация  с оценка  на 
извадковата  грешка  (20), ако наличните  регресивни  модели /­ 
методи  са неподходящи  за данните . 
За оценяване  на LOEC и следователно  на NOEC е необходимо  
да се сравнят  средните  стойности  на третирана  проба , като се 
използва  техниките  за анализ  на променливостта  (ANOVA). 
Средната  стойност  за всяка  концентрация  след  това трябва  да 
се сравни  със средната  стойност  на контролна  проба  с помощта  
на съответния  метод  за многократно  сравняване  или на 
изпитване  за тенденция . Могат  да се използват  изпитвания  на 
Dunnett или на William (21)(22)(23)(24). Необходимо  е да се 
оцени  дали  предположението  ANOVA за хомогенност  на проме­  
нливостта  се запазва . Тази  оценка  може  да се извърши  графично  
или чрез изпитване  за формална  значимост  (25). Подходящи  са 
изпитванията  на Levene или на Bartlett. Невъзможността  за 
удовлетворяване  на предположението  за хомогенност  на проме­  
нливостта  понякога  може  да се коригира  чрез логаритмична  
трансформация  на данните . Ако хетерогенността  е много  
голяма , следва  да се обмисли  анализ  с методи  като низходящите  
изпитвания  на Jonkheere за тенденцията . Допълнителни  насоки  
относно  определянето  на NOEC могат  да се намерят  в (19).  
Най-скорошните  научни  разработки  водят  до препоръка  да бъде  
изоставена  концепцията  за NOEC и тя да бъде  заменена  с 
регресия , базирана  на точкови  оценки  на EC  x . Не е установена  
подходяща  стойност  на x за това изпитване  на Lemna . Но 
изглежда , че диапазонът  от 10 до 20 % е подходящ  (в 
зависимост  от избраната  променлива  на реакцията ) и за предп­  
очитане  е да бъде  отчетена  както  стойността  EC  10 , така и EC  20 . 
3. ОТЧИТАНЕ  
3.1. ПРОТОКОЛ  ОТ ИЗПИТВАНЕТО  
Протоколът  от изпитването  трябва  да включва  следното : 
Изпитвано  вещество : 
— физическа  природа  и физикохимични  свойства , включително  
граница  на водоразтворимост ; ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1365
 
— данни  за химичната  идентификация  (например  CAS номер ), 
включително  чистота . 
Изпитвани  видове : 
— научно  наименование , клонинг  (ако е известен ) и източник . 
Условия  на изпитване : 
— използвана  процедура  на изпитване  (статична , полустатична  
или проточна ); 
— дата на началото  на изпитването  и неговата  продължит­  
елност ; 
— среда  на изпитване ; 
— описание  на експерименталната  постановка : съдове  за 
изпитване  и капаци , обем  на разтворите , брой  колонии  и 
листовидни  тела за един  съд за изпитване  в началото  на 
изпитването ; 
— изпитвани  концентрации  (съответно  номинална  и измерена ) 
и брой  на повторните  проби  за една  концентрация ; 
— методи  за приготвяне  на изходните  и изпитваните  разтвори , 
включително  използването  на всякакви  разтворители  или 
дисперсанти ; 
— температура  по време  на изпитването ; 
— източник  на светлина , интензитет  на светлината  и 
хомогенност ; 
— стойности  на pH за изпитваните  и контролните  среди ; 
— концентрации  на изпитваното  вещество  и метод  за анализ  
със съответните  данни  за оценка  на качеството  (изследвания  
за достоверност , стандартни  отклонения  или доверителни  
граници  на анализите ); 
— методи  за определяне  на броя  на листовидните  тела и други  
измервани  променливи , например  сухо  тегло , свежо  тегло  
или площ  на листовидните  тела; 
— всички  отклонения  от настоящия  метод  за изпитване . 
Резултати : 
— необработени  данни : брой  листовидни  тела и други  
измервани  променливи  във всеки  съд за изпитване  и 
контролен  съд при всяко  наблюдение  и извършен  анализ ; 
— средни  стойности  и стандартни  отклонения  за всяка  
измервана  стойност ; 
— криви  на растежа  за всяка  концентрация  (препоръчително  с 
логаритмично  преобразувана  измервана  стойност , вж. 
втората  алинея  от раздел  2.2.1);  
— време  на удвояване /скорост  на растеж  в контролната  проба  
на базата  на броя  листовидни  тела; 
— изчислените  зависими  променливи  за всяка  третирана  
повторна  проба  със средните  стойности  и коефициент  на 
променливост  за повторните  проби ; 
— графично  представяне  на съотношението  концентрация — 
въздействие ; 
— оценки  на крайните  точки  на токсичност  за променливите  на 
реакцията , например  EC  50 , EC  10 , EC  20 , и съответните  
доверителни  интервали . Ако са изчислени , LOEC и/или 
NOEC и статистическите  методи , използвани  за тяхното  
определяне ; ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1366
 
— ако е използван  ANOVA, размерът  на въздействието , което  
може  да се открие  (например  най-малката  значима  разлика ); 
— всякакво  стимулиране  на растежа , открито  в някоя  третирана  
проба ; 
— всякакви  визуални  знаци  за фитотоксичност , както  и набл­  
юдения  на изпитваните  разтвори ; 
— обсъждане  на резултатите , включително  всякакво  влияние  
върху  резултата  от изпитването , вследствие  на отклонения  
от настоящия  метод  за изпитване . 
4. ЛИТЕРАТУРА  
(1) OECD TG 221 (2006)  Lemna  Sp. Growth Inhibition Test  
(2) The use of  Lemna  studies for coloured substances is detailed in 
Section 13.5.3 of the EU Manual of Decisions dated July 2006, at http://ecb.jrc.ec.europa.eu/new-chemicals
 
(3) Guidance on information requirements and chemical safety 
assessment — Chapter R.7b: Endpoint specific guidance; Table 7.8.3 Summary of difficult substance testing issues, available at
 
http://guidance.echa.europa.eu/docs/guidance_document/ ­
information_requirements_en.htm?time=1234958685#A  
(4) ASTM International. (2003). Standard Guide for Conducting 
Static Toxicity Test With  Lemna gibba  G3. E 1415—91 (Reap ­
proved 1998). pp. 733—742. In, Annual Book of ASTM Stan ­
dards, Vol. 11.05 Biological Effects and Environmental Fate; 
Biotechnology; Pesticides, ASTM, West Conshohocken, PA.  
(5) USEPA — United States Environmental Protection Agency. 
(1996). OPPTS 850.4400 Aquatic Plant Toxicity Test Using  
Lemna  spp., „Public draft“. EPA 712-C-96—156. 8pp.  
(6) AFNOR — Association Française de Normalisation. (1996). 
XP T 90—337: Détermination de l’inhibition de la croissance de Lemna minor . 10pp.
 
(7) SSI — Swedish Standards Institute. (1995). Water quality — 
Determination of growth inhibition (7-d)  Lemna minor , 
duckweed. SS 02 82 13. 15pp. (in Swedish).  
(8) Environment Canada. (1999). Biological Test Method: Test for 
Measuring the Inhibition of Growth Using the Freshwater Macrophyte,  Lemna minor . EPS 1/RM/37—120 pp
 
(9) Environment Canada. (1993) Proposed Guidelines for Regist ­
ration of Chemical Pesticides: Non-Target Plant Testing and Evaluation. Canadian Wildlife Service, Technical Report 
Series No. 145.
 
(10) Sims I., Whitehouse P., and Lacey R. (1999) The ОИСР  
Lemna  Growth Inhibition Test. Development and Ring-testing 
of draft ОИСР  Test Guideline. R&D Technical Report EMA 
003. WRc plc — Environment Agency.  
(11) OECD (2000). Guidance Document on Aquatic Toxicity 
Testing of Difficult Substances and Mixtures. OECD Environ ­
mental Health and Safety Publications, Series on Testing and Assessment No.23.
 
(12) ISO DIS 20079. Water Quality — Determination of the Toxic 
Effect of Water Constituents and Waste Water to Duckweed 
(Lemna minor ) — Duckweed Growth Inhibition Test.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1367
 
(13) Walbridge C. T. (1977). A flow-through testing procedure with 
duckweed ( Lemna minor  L.). Environmental Research Labo ­
ratory — Duluth, Minnesota 55804. US EPA Report No. EPA-600/3—77 108. September 1977.
 
(14) Lockhart W. L., Billeck B. N. and Baron C. L. (1989). 
Bioassays with a floating plant ( Lemna minor ) for effects of 
sprayed and dissolved glyphosate. Hydrobiologia, 118/119, 
353—359.  
(15) Huebert, D.B. and Shay J.M. (1993) Considerations in the 
assessment of toxicity using duckweeds. Environmental Toxi ­
cology and Chemistry, 12, 481—483.  
(16) Christensen, E.R., Nyholm, N. (1984): Ecotoxicological Assays 
with Algae: Weibull Dose-Response Curves. Env. Sci. Technol. 19, 713—718.
 
(17) Nyholm, N. Sørensen, P.S., Kusk, K.O. and Christensen, E.R. 
(1992): Statistical treatment of data from microbial toxicity 
tests. Environ. Toxicol. Chem. 11, 157—167.  
(18) Bruce R.D. and Versteeg D.J. (1992) A statistical procedure for 
modelling continuous toxicity data. Environmental Toxicology and Chemistry, 11, 1485—1494.
 
(19) OECD. (2004). Guidance Document on Statistical Analysis of 
Ecotoxicity Data.  
(20) Norberg-King T.J. (1988) An interpolation estimate for chronic 
toxicity: The ICp approach. National Effluent Toxicity Assessment Center Technical Report 05—88. USEPA, Duluth, MN.
 
(21) Dunnett, C.W. (1955) A multiple comparisons procedure for 
comparing several treatments with a control. J. Amer. Statist. Assoc., 50, 1096—1121.
 
(22) Dunnett, C.W. (1964) New tables for multiple comparisons 
with a control. Biometrics, 20, 482—491.  
(23) Williams, D.A. (1971) A test for differences between treatment 
means when several dose levels are compared with a zero dose control. Biometrics, 27: 103—117.
 
(24) Williams, D.A. (1972) The comparison of several dose levels 
with a zero dose control. Biometrics, 28: 510—531.  
(25) Brain P. and Cousens R. (1989). An equation to describe dose- 
responses where there is stimulation of growth at low doses. 
Weed Research, 29, 93—96.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1368
 
Допълнение  1 
Описание  на вида  Lemna  
Водното  растение  Lemna , обикновено  наричано  водна  леща , принадлежи  на 
семейството  Lemnaceae , което  има няколко  вида  в четири  рода , 
разпространени  в целия  свят. Техният  различен  външен  вид и таксономия  
са описани  изчерпателно  в (1)(2).  Lemna gibba  и L. minor  са представители  
на вида  в умерените  области  и обикновено  се използват  за изпитвания  за 
токсичност . И двата  вида  имат  плаващо  или потопено  във водата  
дисковидно  стъбло  (листовидно  тяло ), а много  тънък  корен  излиза  от 
центъра  на долната  повърхност  на всяко  листовидно  тяло . Видът  Lemna  
рядко  дава цвят  и растенията  се размножават  чрез вегетативно  създаване  
на нови  листовидни  тела (3). В сравнение  с по-възрастните  растения  
младите  са по-бледи , имат  по-къси  корени  и се състоят  от две до три лист­  
овидни  тела с различни  размери . Малкият  размер  на Lemna , опростената  
структура , безполовото  размножаване  и краткото  време  за създаване  на 
поколение  правят  растението  много  подходящо  за лабораторни  изпитвания  
(4)(5).  
Поради  възможно  междувидово  вариране  по отношение  на чувствителност , 
валидни  са сравнения  на чувствителността  единствено  в рамките  на един  
вид. 
Примери  за видове  Lemna , които  са били  използвани  за изпитване : 
Референтни  видове  
Lemna aequinoctialis : Eklund, B. (1996). The use of the red alga  Ceramium 
strictum  and the duckweed  Lemna aequinoctialis  in aquatic ecotoxicological 
bioassays. Licentiate in Philosophy Thesis 1996:2. Dep. of Systems Ecology, 
Stockholm University.  
Lemna major : Clark, N. A. (1925). The rate of reproduction of  Lemna major  as a 
function of intensity and duration of light. J. phys. Chem., 29: 935—941.  
Lemna minor : United States Environmental Protection Agency (USEPA). (1996). 
OPPTS 850.4400 Aquatic Plant Toxicity Test Using  Lemna  spp., „Public draft“. 
EPA 712-C-96—156. 8pp.  
Association Française de Normalisation (AFNOR). (1996). XP T 90—337: 
Détermination de l’inhibition de la croissance de  Lemna minor . 10pp.  
Swedish Standards Institute (SIS). (1995). Water quality — Determination of 
growth inhibition (7-d)  Lemna minor , duckweed. SS 02 82 13. 15pp. 
(in Swedish).  
Lemna gibba : ASTM International. (2003). Standard Guide for Conducting Static 
Toxicity Test With  Lemna gibba  G3. E 1415—91 (Reapproved 1998). pp. 
733—742.  
United States Environmental Protection Agency (USEPA). (1996). OPPTS 
850.4400 Aquatic Plant Toxicity Test Using  Lemna  spp., „Public draft“. EPA 
712-C-96—156. 8pp.  
Lemna paucicostata : Nasu, Y., Kugimoto, M. (1981).  Lemna  (duckweed) as an 
indicator of water pollution. I. The sensitivity of  Lemna paucicostata  to heavy 
metals. Arch. Environ. Contam. Toxicol., 10:1959—1969.  
Lemna perpusilla : Clark, J. R. et al. (1981). Accumulation and depuration of 
metals by duckweed ( Lemna perpusilla ). Ecotoxicol. Environ. Saf., 5:87—96.  
Lemna trisulca : Huebert, D. B., Shay, J. M. (1993). Considerations in the 
assessment of toxicity using duckweeds. Environ. Toxicol. and Chem., 
12:481—483.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1369
 
Lemna valdiviana : Hutchinson, T.C., Czyrska, H. (1975). Heavy metal toxicity 
and synergism to floating aquatic weeds. Verh.-Int. Ver. Limnol., 
19:2102—2111.  
Източници  на видове  Lemna  
University of Toronto Culture Collection of Algae and Cyanobacteria  
Department of Botany, University of Toronto  
Toronto, Ontario, Canada, M5S 3 B2  
Tel: +1–416–978–3641  
Fax:+1–416–978–5878  
e-mail: jacreman@botany.utoronto.ca  
http://www.botany.utoronto.ca/utcc  
North Carolina State University  
Forestry Dept  
Duckweed Culture Collection  
Campus Box 8002  
Raleigh, NC 27695–8002  
United States  
phone 001 (919) 515–7572  
astomp@unity.ncsu.edu  
Institute of Applied Environmental Research (ITM) Stockholm University  
SE-106 91 Stockholm  
SWEDEN  
Tel: +46 8 674 7240  
Fax +46 8 674 7636  
Federal Environmental Agency (UBA)  
FG III 3.4  
Schichauweg 58  
12307 Berlin  
Germany  
e-mail: lemna@uba.de  
http://www.umweltbundesamt.de/contact.htm  
Литература  
(1) Hillman, W.S. (1961). The  Lemnaceae  or duckweeds: A review of the 
descriptive and experimental literature. The Botanical Review, 
27:221—287.  
(2) Landolt, E. (1986). Biosystematic investigations in the family of duckweed 
(Lemnaceae ). Vol. 2. Geobotanischen Inst. ETH, Stiftung Rubel, Zürich, 
Switzerland.  
(3) Björndahl, G. (1982). Growth performance, nutrient uptake and human 
utilization of duckweeds ( Lemnaceae  family). ISBN 
82—991150—0—0. The Agricultural Research Council of Norway, University of Oslo.
 
(4) Wang, W. (1986). Toxicity tests of aquatic pollutants by using common 
duckweed. Environmental Pollution, Ser B, 11:1—14.  
(5) Wang, W. (1990). Literature review on duckweed toxicity testing. Environ ­
mental Research, 52:7—22.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1370
 
Допълнение  2 
Поддържане  на изходната  култура  
Изходните  култури  могат  да бъдат  поддържани  при по-ниски  температури  
(4—10 °C) за продължителни  периоди  без да има нужда  да бъдат  възста­  
новявани . Средата  на растеж  на Lemna  може  да е същата  като тази, 
използвана  за изпитването , но за изходните  култури  може  да се използва  
друга  богата  хранителна  среда . 
Периодично  няколко  млади , светлозелени  растения  се преместват  с 
помощта  на стерилна  техника  в нови  съдове  за култури , които  съдържат  
прясна  среда . При предложените  тук по-студени  условия  субкултивирането  
може  да се провежда  на интервали  до три месеца . 
Трябва  да се използват  химически  чисти  (промити  с киселина ) и стерилни  
стъклени  съдове  за културите , както  и да се прилага  асептична  техника  за 
манипулиране . При замърсяване  на изходната  култура , например  с 
водорасли  и гъби , е необходимо  да се вземат  мерки  за премахване  на 
замърсяващите  организми . При замърсяване  с водорасли  и много  други  
замърсяващи  организми  това може  да се постигне  с повърхностна  
стерилизация . Взима  се проба  със замърсен  растителен  материал  и 
корените  се отрязват . След  това материалът  се разклаща  енергично  и 
после  се потапя  в 0,5 % (v/v) разтвор  на натриев  хипохлорит  за период  
между  30 секунди  и 5 минути . След  това растителният  материал  се 
изплаква  със стерилна  вода  и се прехвърля  на няколко  партиди  в съдове  
за култури , съдържащи  прясна  среда  на растеж . В резултат  на тази 
обработка , много  от листовидните  тела ще умрат , особено  ако се 
използват  по-дълги  периоди  на експозиция , но някои  от преживелите  обик­  
новено  не са замърсени . Те биха  могли  след  това да се използват  за инок­  
улиране  на нови  култури . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1371
 
Допълнение  3 
Среди  
За L. minor  и L. gibba  се препоръчват  различни  среди  на растеж . За L. minor  
се препоръчва  среда , модифицирана  съгласно  шведски  стандарт  (SIS), 
докато  за L. gibba  се препоръчва  среда  20X AAP. Съставните  елементи  на 
двете  среди  са дадени  по-долу . При приготвянето  на тези среди  трябва  да се 
използват  реактиви  или химикали  с аналитично  качество  и дейонизирана  
вода . 
Среда  на растеж  за Lemna съгласно  шведски  стандарт  (SIS)  
— Изходните  разтвори  I—V се стерилизират  чрез обработка  в автоклав  
(120 °C, 15 минути ) или чрез мембранно  филтриране  (размер  на 
порите  приблизително  0,2 μm). 
— Изходният  разтвор  VI (и по избор  VII) се стерилизират  само  чрез 
мембранно  филтриране ; те не трябва  да се обработват  в автоклав . 
— Стерилните  изходни  разтвори  трябва  да се съхраняват  на тъмно  и 
хладно . Изходните  разтвори  I—V трябва  да се изхвърлят  след  шест  
месеца , докато  изходният  разтвор  VI (и по избор  VII) има срок  на 
съхранение  един  месец . 
Изходен  
разтвор  № Вещество  Концентрация  в 
изходния  разтвор  
(g· l  –1 ) Концентрация  в 
приготвената  
среда  (mg·l  –1 ) Приготвена  среда  
Елемент  Концентрация  
(mg·l  –1 ) 
I NaNO  3 
KH  2 PO 4 8,50 
1,34 85 
13,4 Na; N 
K; P 32; 14 
6,0; 2,4 
II MgSO  4 · 7H  2 O 15 75 Mg; S 7,4; 9,8 
III CaCl  2 · 2H  2 O 7,2 36 Ca; Cl 9,8; 17,5 
IV Na 2 CO 3 4,0 20 C 2,3 
V H 3 BO 3 
MnCl  2 · 4H  2 O 
Na 2 MoO  4 · 2H  2 O 
ZnSO  4 · 7H  2 O 
CuSO  4 · 5H  2 O 
Co(NO  3 ) 2 · 6H  2 O 1,0 
0,20 0,010 
0,050 
0,0050 0,010 1,00 
0,20 0,010 
0,050 
0,0050 0,010 B 
Mn Mo 
Zn 
Cu Co 0,17 
0,056 0,0040 
0,011 
0,0013 0,0020 
VI FeCl
 3 · 6H  2 O 
Na 2 -EDTA·2H  2 O 0,17 
0,28 0,84 
1,4 Fe 
— 0,17 
— 
VII MOPS (буфер ) 490 490 — —  
— За приготвянето  на един  литър  среда  съгласно  SIS към 900 ml 
дейонизирана  вода  се добавят  следните  съставки : 
— 10 ml от изходен  разтвор  I 
— 5 ml от изходен  разтвор  II 
— 5 ml от изходен  разтвор  III 
— 5 ml от изходен  разтвор  IV ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1372
 
— 1 ml от изходен  разтвор  V 
— 5 ml от изходен  разтвор  VI 
— 1 ml от изходен  разтвор  VII (по избор ) 
Забележка : Може  да е необходим  допълнителен  изходен  разтвор  VII (буфер  
MOPS) за определени  изпитвани  вещества  (вж. последната  алинея  
от раздел  1.4).  
— Стойността  на pH се регулира  на 6,5 ± 0,2 с 0,1 или 1 mol HCl или 
NaOH, а обемът  се регулира  до един  литър  с дейонизирана  вода . 
Среда  на растеж  20X AAP  
Изходните  разтвори  се приготвят  в стерилна  дестилирана  или дейонизирана  
вода . 
Стерилните  изходни  разтвори  трябва  да се съхраняват  на студено  и тъмно . 
При тези условия  изходните  разтвори  ще имат  срок  на съхранение  най- 
малко  6—8 седмици . 
Пет хранителни  изходни  разтвора  (A1, A2, A3, B и C) се приготвят  за 
средата  20X — AAP с помощта  на химикали  с аналитично  качество . 
20 ml от всеки  хранителен  изходен  разтвор  се добавят  към приблизително  
850 ml дейонизирана  вода  за изготвяне  на средата  на растеж . Стойността  на 
pH се регулира  до 7,5 ± 0,1 с 0,1 или 1 mol HCl или NaOH, а обемът  се 
регулира  до един  литър  с дейонизирана  вода . След  това средата  се 
филтрира  през мембранен  филтър  с 0,2 μm (приблизително ) в стерилен  
контейнер . 
Средата  на растеж , предназначена  за изпитването , трябва  да се приготви  
1—2 дни преди  да се използва , за да се даде  възможност  на pH да се 
стабилизира . Стойността  на pH в средата  на растеж  трябва  да се провери  
преди  да се използва  и при необходимост  да се регулира  отново  чрез 
добавяне  на 0,1 или 1 M NaOH или HCl, както  е описано  по-горе. 
№ на изходен  
разтвор  Вещество  Концентрация  в 
изходния  разтвор  
(g·l –1 ) ( 1 ) Концентрация  в 
приготвената  
среда  (mg·l  –1 ) (*) Приготвена  среда  
Елемент  Концентрация  
(mg·l  –1 ) (*) 
A1 NaNO  3 
MgCl  2 ·6H  2 O 
CaCl  2 ·2H  2 O 26 
12 4,4 510 
240 90 Na; N 
Mg Ca 190; 84 
58,08 24,04 
A2 MgSO
 4 ·7H  2 O 15 290 S 38,22 
A3 K 2 HPO  4 ·3H  2 O 1,4 30 K; P 9,4;3,7 
B H 3 BO 3 
MnCl  2 ·4H  2 O 
FeCl  3 ·6H  2 O 
Na 2 EDTA·2H  2 O 
ZnCl  2 
CoCl  2 ·6H  2 O 
Na 2 MoO  4 ·2H  2 O 
CuCl  2 ·2H  2 O 0,19 
0,42 0,16 
0,30 
3,3 mg·l
 –1 
1,4 mg·l  –1 
7,3 mg·l  –1 
0,012 mg·l  –1 3,7 
8,3 3,2 
6,0 
66 μg·l
 –1 
29 μg·l –1 
145 μg·l –1 
0,24 μg·l –1 B 
Mn Fe 
— 
Zn Co 
Mo 
Cu 0,65 
2,3 0,66 
— 
31 μg·l
 –1 
7,1 μg·l –1 
58 μg·l –1 
0,080 μg·l –1 
C NaHCO  3 15 300 Na; C 220; 43  
(*) Освен  ако не е посочено . ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1373
 
Бележка  под линия : Теоретично  подходящата  крайна  концентрация  на бикарбонат  
(при която  ще се избегне  съществено  регулиране  на стойността  
на pH) е 15 mg/l, а не 300 mg/l. В исторически  план  обаче  
ползването  на средата  20X-AAP, включително  кръговото  
изпитване  за настоящия  метод , се базира  на 300 mg/l. (I. Sims, 
P. Whitehouse и R. Lacey. (1999) The OECD  Lemna  Growth Inhi ­
bition Test. Development and Ring testing of draft OECD Test 
Guideline. R&D Technical Report EMA 003. WRc plc — Envi ­
ronment Agency.  
Среда  на Steinberg ( съгласно  ISO 20079)  
Концентрации  и изходни  разтвори  
— Модифицираната  среда  на Steinberg се използва  в ISO 20079 само  за 
Lemna minor  (само  ако там се разрешава  Lemna minor ), но изпитванията  
са показали , че могат  да се постигнат  добри  резултати  също  и с Lemna 
gibba . 
— При приготвяне  на средата  трябва  да се използват  реактиви  или 
химикали  с аналитично  качество  и дейонизирана  вода . 
— Хранителната  среда  да се приготвя  от изходни  разтвори  или 10-кратно  
концентрирана  среда , която  позволява  максимална  концентрация  на 
средата  без утаяване . 
Таблица  1 
pH-стабилизирана  среда  на Steinberg ( модифицирана  съгласно  Altenburger)  
Вещество  Хранителна  среда  
Макроелементи  Моларна  маса  mg/l mmol/l  
KNO  3 101,12 350,00 3,46 
Ca(NO  3 ) 2 · 4H  2 O 236,15 295,00 1,25 
KH  2 PO 4 136,09 90,00 0,66 
K 2 HPO  4 174,18 12,60 0,072 
MgSO  4 · 7H  2 O 246,37 100,00 0,41  
Микроелементи  Моларна  маса  μg/l μmol/l 
H 3 BO 3 61,83 120,00 1,94 
ZnSO  4 · 7H  2 O 287,43 180,00 0,63 
Na 2 MoO  4 · 2H  2 O 241,92 44,00 0,18 
MnCl  2 · 4H  2 O 197,84 180,00 0,91 
FeCl  3 · 6H  2 O 270,21 760,00 2,81 
Двунатриев  дихидрат  на 
EDTA 372,24 1 500,00 4,03  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1374
 
Таблица  2 
Изходни  разтвори  (макроелементи ) 
1. Макроелементи  (50-кратно  концентрирани ) g/l  
Изходен  разтвор  1: 
KNO  3 17,50 
KH  2 PO 4 4,5 
K 2 HPO  4 0,63 
Изходен  разтвор  2: 
MgSO  4 · 7H  2 O 5,00  
Изходен  разтвор  3: 
Ca(NO  3 ) 2 · 4H  2 O 14,75  
Таблица  3 
Изходни  разтвори  (микроелементи ) 
2. Микроелементи  (1 000-кратно  концентрирани ) mg/l  
Изходен  разтвор  4: 
H 3 BO 3 120,0  
Изходен  разтвор  5: 
ZnSO  4 · 7H  2 O 180,0  
Изходен  разтвор  6: 
Na 2 MoO  4 · 2H  2 O 44,0  
Изходен  разтвор  7: 
MnCl  2 · 4H  2 O 180,0  
Изходен  разтвор  8: 
FeCl  3 · 6H  2 O 760,00 
Двунатриев  дихидрат  на EDTA 1 500,00  
— Изходните  разтвори  2 и 3 и отделно  разтворите  от 4 до 7 могат  да бъдат  
обединени  (като се вземе  под внимание  нужната  концентрация ). 
— За по-дълъг  срок  на съхранение  изходните  разтвори  да се обработват  в 
автоклав  при 121 °C в течение  на 20 минути  или алтернативно  да се 
извърши  стерилна  филтрация  (0,2 μm). За изходен  разтвор  8 настоятелно  
се препоръчва  стерилната  филтрация  (0,2 μm). 
Приготвяне  на крайната  концентрация  на средата  на Steinberg ( модиф­  
ицирана ) 
— Добавете  20 ml от изходните  разтвори  1, 2 и 3 (вж. таблица  2) към около  
900 ml дейонизирана  вода , за да се избегне  утаяването . 
— Добавете  1,0 ml от изходни  разтвори  4, 5, 6, 7 и 8 (вж. таблица  3). 
— Стойността  на pH трябва  да е 5,5 ± 0,2 ( регулирайте  чрез добавяне  на 
минимално  количество  разтвор  на NaOH или HCl)  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1375
 
— Регулирайте  с вода  до 1 000 ml.  
— Ако изходните  разтвори  са стерилизирани  и е използвана  подходяща  
вода , не е необходима  допълнителна  стерилизация . Ако стерилизацията  
се извършва  с крайната  среда , изходен  разтвор  8 трябва  да се добави  
след  обработка  в автоклав  (при 121 °C в продължение  на 20 минути ). 
Приготвяне  на 10-кратно  концентрирана  среда  на Steinberg ( модиф­  
ицирана ) за междинно  съхраняване  
— Добавете  20 ml от изходните  разтвори  1, 2 и 3 (вж. таблица  2) към около  
900 ml дейонизирана  вода , за да се избегне  утаяването . 
— Добавете  1,0 ml от изходните  разтвори  4, 5, 6, 7 и 8 (вж. таблица  3). 
Регулирайте  с вода  до 100 ml.  
— Ако изходните  разтвори  са стерилизирани  и е използвана  подходяща  
вода , не е необходима  допълнителна  стерилизация . Ако стерилизацията  
е извършена  с крайната  среда , изходен  разтвор  8 трябва  да се добави  
след  обработка  в автоклав  (при 121 °C в продължение  на 20 минути ). 
— Стойността  на pH на средата  (крайна  концентрация ) трябва  
да е 5,5 ± 0,2.  ▼M1 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1376
 
В.27 ИЗПИТВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА ХИРОНОМИДИ  В 
СИСТЕМА  ВОДА –СЕДИМЕНТ  С ИЗПОЛЗВАНЕ  НА СЕДИМЕНТ  С 
ДОБАВКА  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на Насоките  за 
изпитване  (НИ) на ОИСР  218 (2004). Настоящият  метод  за изпитване  
е предназначен  за оценка  на въздействието  на продължителната  
експозиция  на химикали  на живеещи  в седимента  ларви  на сладко­  
водното  двукрило  Chironomus  sp. Методът  се основава  на 
съществуващите  протоколи  за изпитване  на токсичност  за Chironomus 
riparius  и Chironomus tentans,  разработени  в Европа  (1)(2)(3) и Северна  
Америка  (4)(5)(6)(7)(8) и подложени  на кръгово  изпитване  (1)(6)(9). 
Могат  да се използват  и други  добре  документирани  видове  
хирономиди , напр . Chironomus yoshimatsui  (10)(11).  
2. Сценарият  за експозиция , който  се използва  в настоящия  метод  за 
изпитване , е добавяне  към седимента  на изпитваното  вещество . 
Изборът  на подходящ  сценарий  за експозиция  зависи  от предвиденото  
приложение  на изпитването . Сценарият  за добавяне  към седимента  е 
предназначен  за симулиране  на натрупване  на химикали , които  трайно  
се задържат  в седимента . Този  начин  на експозиция  включва  добавяне  
към седимент  в система  седимент -вода . 
3. Веществата , които  трябва  да бъдат  изпитани  с помощта  на организми , 
живеещи  в седимента , обикновено  са устойчиви  в тази естествена  среда  
за дълги  периоди  от време . Живеещите  в седимента  организми  могат  да 
бъдат  експонирани  по различни  пътища . Относителната  важност  на 
всеки  път на експозиция  и времето , необходимо  за всеки  от тях да 
способства  за общото  токсично  въздействие , зависят  от физичните  и 
химичните  свойства  на съответния  химикал . За силно  адсорбиращите  
вещества  (напр . с log K  ow > 5) или за вещества , които  образуват  
ковалентна  връзка  със седимента , поглъщането  на замърсена  храна  
може  да бъде  значим  път на експозиция . За да не се подцени  токсич­  
ността  на силно  липофилните  вещества , може  да се разгледа  възмож­  
ността  за добавяне  на храна  в седимента , преди  да бъде  приложено  
изпитваното  вещество . За да се вземат  предвид  всички  възможни  
пътища  на експозиция , настоящият  метод  за изпитване  е ориентиран  
главно  към експозицията  в дългосрочен  план . Продължителността  на 
изпитването  е от 20 до 28 дни за C. riparius  и C. yoshimatsui , и 28—65 
дни за C. tentans.  Ако за определена  специфична  цел се изискват  данни  
в краткосрочен  план , за да се изследва  например  въздействието  на 
нестабилен  химикал , допълнителните  повторения  могат  да се 
прекратят  след  период  от десет  дни. 
4. Измерваните  крайни  точки  са общият  брой  на имагиниралите  
възрастни  и времето  до имагиниране . Ако са необходими  допълн­  
ителни  данни  в краткосрочен  план , препоръчва  се измерването  на 
преживяването  и растежа  на ларвите  да се извършва  едва след  
десетдневен  период , като се използват , ако е необходимо , допълн­  
ителни  повторения . 
5. Препоръчва  се употребата  на приготвен  седимент . Приготвеният  
седимент  има някои  преимущества  пред  естествените  такива : 
— намалява  се експерименталното  вариране , тъй като приготвеният  
седимент  играе  ролята  на „стандартна  матрица “ и отпада  необход­  
имостта  да се намират  източници  на незамърсен  и чист  седимент , 
— изпитванията  могат  да започнат  по всяко  време , без да се влияят  от 
сезонната  променливост  на включения  в изпитването  седимент , и 
без да се налага  седиментът  да се подлага  на предварителна  подг­  
отовка  за отстраняване  на собствената  му фауна ; използването  на 
приготвен  седимент  намалява  и разходите  във връзка  със 
събирането  в полеви  условия  на достатъчно  количество  седимент  
за рутинните  изпитвания , 
— използването  на приготвен  седимент  позволява  сравняване  на токс­  
ичността  и съответно  подреждане  на веществата . 
6. Определенията  са дадени  в допълнение  1. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1377
 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
7. Ларви  на хирономиди  в първи  ларвен  стадий  се излагат  на обхват  от 
концентрации  на изпитвания  химикал  в система  вода  – седимент . 
Изпитваното  вещество  се добавя  към седимента  и ларвите  в първи  
ларвен  стадий  се въвеждат  в изпитвателните  бехерови  чаши , в които  
концентрацията  на вода  и седимент  са били  стабилизирани . В края  на 
изпитването  се измерва  имагинирането  на хирономидите  и скоростта  
им на развитие . Може  също  да се измери  и преживяването  и теглото  на 
ларвите  след  10 дни, ако е необходимо  (като се използват , ако трябва , 
допълнителни  повторения ). Данните  се анализират , като се използва  
регресионен  модел , за да се оцени  концентрацията , която  предизвиква  
намаляване  с х % на растежа  или на имагинирането  или преживяването  
на ларвите  (напр . EC  15 , EC  50 и т.н.), или като се използва  проверка  на 
статистическа  хипотеза  за определяне  на NOEC/LOEC. Последното  
изисква  сравнение  на стойностите , при които  се наблюдава  възде­  
йствие , с контролните  стойности , като се използват  статистически  
проверки . 
ИНФОРМАЦИЯ  ОТНОСНО  ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
8. Разтворимостта  във вода  и парното  налягане  на изпитваното  вещество , 
измереното  или изчисленото  му разпределение  в седимента  и стабил­  
ността  му във вода  и в седимент  следва  да са известни . Следва  да е на 
разположение  и надежден  метод  за анализ  за количествено  определяне  
на веществото  във водата  над седимента , във водата  в порите  и в 
седимента , чиито  точност  и граница  на откриване  са известни  и 
отчетени . Полезна  информация  са структурната  формула  и чистотата  
на изпитваното  вещество . Информация  за химическата  трансформация  
на изпитваното  вещество  (разсейване , абиотично  и биотично  
разграждане  и т.н.) също  е полезна . Допълнителни  насоки  за 
изпитване  на вещества  с физични  и химични  свойства , които  ги 
правят  трудни  за изпитване , са дадени  в (12).  
РЕФЕРЕНТНИ  ХИМИКАЛИ  
9. Референтните  химикали  може  да се изпитват  периодично  като средство  
за потвърждение , че протоколът  за изпитване  и условията  на изпитване  
са надеждни . Могат  да се посочат  като пример  следните  референтни  
токсични  вещества , използвани  успешно  в кръгови  изпитвания  и в 
изследвания  за валидиране : линдан , трифлуралин , пентахлорофенол , 
кадмиев  хлорид  и калиев  хлорид  (1)(2)(5)(6)(13).  
ВАЛИДНОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
10. За да бъде  изпитването  валидно , се прилагат  се следните  условия : 
— в края  на изпитването  имагинирането  в контролните  експерименти  
трябва  да бъде  поне  70 % (1)(6),  
— имагинирането  на C. riparius  и C. yoshimatsui  в контролните  съдове  
трябва  да настъпва  между  12 и 23 дни след  въвеждането  им в 
съдовете ; за C. tentans  е необходим  период  от 20 до 65 дни, 
— в края  на изпитването  следва  да се измери  рН и концентрацията  на 
разтворения  кислород  във всички  съдове . Концентрацията  на 
разтворен  кислород  трябва  да бъде  поне  60 % от стойността  на 
насищане  на въздуха  при използваната  температура , а рН на 
водата  над седимента  следва  да бъде  в обхвата  6—9 във всички  
съдове , в които  се извършва  изпитването , 
— температурата  на водата  не трябва  да се колебае  с повече  от ± 1 °С 
и може  да се контролира  в изотермично  помещение , като в този 
случай  температурата  в помещението  трябва  да се потвърждава  на 
подходящ  интервал  от време . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1378
 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Съдове  за извършване  на изпитването  
11. Изпитването  се извършва  в стъклени  бехерови  чаши  с вместимост  600 
ml и диаметър  8 cm. Подходящи  са и други  съдове , но те следва  да 
осигуряват  подходяща  дълбочина  на водата  над седимента  и на самия  
седимент . Площта  на седимента  трябва  да бъде  достатъчна , за да 
осигурява  2 до 3 cm  2 на ларва . Съотношението  между  дебелината  на 
слоя  седимент  и тази на водата  над него  трябва  да бъде  1:4. Съдовете  
за изпитване  и другото  оборудване , което  ще влезе  в контакт  с 
изпитваната  система , следва  да бъде  изцяло  от стъкло  или от друг  
химически  инертен  материал  (напр . тефлон ). 
Избор  на видове  
12. Видът , който  трябва  да се използва  при изпитването , е за предпочитане  
Chironomus riparius . Chironomus tentans  също  е подходящ , но с него  се 
борави  по-трудно  и е необходим  по-дълъг  период  на изпитване . 
Chironomus yoshimatsui  също  може  да бъде  подходящ . Подробности  
за методите  на отглеждане  на Chironomus riparius  са дадени  в 
допълнение  2. Налична  е и информация  за условията  на отглеждане  
на други  видове , т.е., Chironomus tentans  (4) и Chironomus yoshimatsui  
(11). Идентичността  на видовете  трябва  да се потвърждава  преди  
изпитването , но не е задължителна  преди  всеки  експеримент , ако орга­  
низмите  са получени  при отглеждане  в изпитващата  лаборатория . 
Седимент  
13. За предпочитане  е да се използва  приготвен  седимент  (наричан  още 
възстановен , изкуствен  или синтетичен  седимент ). Ако обаче  се 
използва  естествен  седимент , трябва  да се определят  характеристиките  
му (най-малко  рН и съдържание  на органичен  въглерод , а определянето  
на други  параметри , напр ., на съотношението  C/N и зърнометричния  
състав , също  се препоръчва ), той следва  да бъде  незамърсен  и в него  да 
няма  други  организми , които  да се конкурират  с хирономидите , или да 
се хранят  с тях. Препоръчва  се също  така, преди  използването  му в 
изпитване  за токсичност  за хирономиди , естественият  седимент  да бъде  
държан  в продължение  на седем  дни при същите  условия , при които  
ще се провежда  изпитването . За използване  в описаното  тук изпитване  
(1)(15)(16) се препоръчва  следният  седимент , приготвен  въз основа  на 
изкуствената  почва , използвана  в метод  за изпитване  В.8 (14):  
а) 4—5 % торф  (сухо  тегло ): с рН възможно  най-близко  до обхвата  
5,5—6,0; важно  е да се използва  торф  под формата  на прах , ситно  
смлян  (размер  на частиците  1 mm) и изсушен  само  с въздух ; 
б) 20 % каолин  (сухо  тегло ) (за предпочитане  съдържанието  на 
каолинит  да е повече  от 30 %);  
в) 75—76 % кварцов  пясък  (сухо  тегло ) (трябва  да преобладава  финият  
пясък  с размер  на над 50 % от частиците  между  50 и 200 μm); 
г) добавя  се дейонизирана  вода , така че да влажността  на крайната  
смес  да бъде  в обхвата  30—50 %;  
д) добавя  се химически  чист  калциев  карбонат  (CaCO  3 ), за да се 
коригира  рН на крайната  смес  на седимента  до 7,0 ± 0,5. 
Съдържанието  на органичен  въглерод  в крайната  смес  следва  да 
бъде  2 % (± 0,5 %) и да бъде  коригирано , като се използват  
подходящи  количества  торф  и пясък , в съответствие  с (а) и (в). 
14. Източниците  на торф , каолин  и пясък  трябва  да са известни . 
Съставките  на седимента  следва  да се проверят  за наличие  на 
химическо  замърсяване  (напр . тежки  метали , органохлорни , органо­  
фосфорни  съединения  и т.н.). Пример  за изготвянето  на приготвен  
седимент  е даден  в допълнение  3. Допустимо  е също  и смесването  на 
сухи  съставки , ако се докаже , че след  добавянето  на вода  над 
седимента  не настъпва  разделяне  на съставките  на седимента  (напр . 
изплуване  на торфените  частици ), и че торфът  или седиментът  са подг­  
отвени  в необходимата  степен . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1379
 
Вода  
15. Всяка  вода , която  отговаря  на химичните  характеристики  за вода , 
приемлива  за използване  за разреждане , както  са изброени  в 
допълнение  2 и 4, е подходяща  да се използва  като вода  за 
изпитването . Всяка  подходяща  вода , природна  вода  (от повърхностни  
или подпочвени  води ), реконституирана  вода  (вж. допълнение  2) или 
дехлорирана  чешмяна  вода  може  да се използва  за отглеждане  и за 
изпитване , ако хирономидите  оцеляват  в нея за времето  на отглеждане  
и изпитване , без да показват  признаци  на стрес . В началото  на 
изпитването  рН на водата  за изпитване  трябва  да бъде  между  6 и 9, 
а общата  ѝ твърдост  — не по-висока  от 400 mg/l, изразена  като CaCO  3 . 
Ако обаче  се предполага  взаимодействие  между  йоните , от които  
произтича  твърдостта , и изпитваното  вещество , следва  да се използва  
вода  с по-ниска  твърдост  (и затова  в този случай  не трябва  да се 
използва  среда  „Elendt Medium M4“). По време  на цялото  изпитване  
трябва  да се използва  един  и същи  тип вода . Качествените  параметри  
на водата , изброени  в допълнение  4, следва  да се измерват  поне  два 
пъти  годишно  или всеки  път когато  има подозрение , че тези 
характеристики  може  да са се променили  значително . 
Изходни  разтвори  — седименти  с добавка  
16. Обикновено  седименти  те с добавка  с избрана  концентрация  се 
приготвят  чрез добавяне  на разтвор  на изпитваното  вещество  
директно  към седимента . Изходен  разтвор  на изпитваното  вещество , 
разтворено  в дейонизирана  вода , се смесва  с приготвения  седимент  с 
помощта  на валцова  мелница , смесител  за фураж , или смесване  с ръка . 
Ако е малко  разтворимо  във вода , изпитваното  вещество  може  да бъде  
разтворено  във възможно  най-малък  обем  подходящ  органичен  разт­  
ворител  (например  хексан , ацетон  или хлороформ ). След  това този 
разтвор  се смесва  с 10 g фин кварцов  пясък  за всеки  съд за изпитване . 
Оставя  се разтворителят  да се изпари  и същият  следва  да бъде  напълно  
елиминиран  от пясъка ; тогава  пясъкът  се смесва  с необходимото  
количество  седимент  за всяка  бехерова  чаша  за изпитването . За 
разтваряне , диспергиране  или емулгиране  на изпитваното  вещество  
могат  да се използват  само  средства , които  лесно  се изпаряват . 
Трябва  да се помни , че пясъкът , добавен  заедно  с изпитваното  
вещество  и пясъчната  смес , трябва  да се взема  предвид  при приг­  
отвянето  на седимента  (т.е., седиментът  трябва  следователно  да се 
приготвя  с по-малко  количество  пясък ). Трябва  да се внимава  
изпитваното  вещество , добавено  към седимента , да бъде  старателно  и 
равномерно  разпределено  в целия  му обем . Ако е необходимо , може  да 
се анализират  проби  от пробите , за да се определи  степента  на 
хомогенност . 
ПЛАН  НА ИЗПИТВАНЕТО  
17. Планът  на изпитването  се отнася  до избор  на броя  на стойностите  на 
концентрацията  на изпитване  и интервалите  между  тези стойности , 
броя  на съдовете  за всяка  концентрация  и броя  на ларвите  във всеки  
съд. Описани  са планове  на изпитване  за определяне  на точките  на 
концентрация , при която  се проявява  въздействие  (ЕС), за определяне  
на NOEC и за провеждане  на гранично  изпитване . 
Планиране  на регресионен  анализ  
18. Концентрацията , при която  се проявява  въздействие  (напр . ЕС 15 , EC  50 ) 
и интервалът  концентрации , над които  въздействието  на изпитваното  
вещество  е от значение , следва  да бъдат  обхванати  от концентрациите , 
включени  в изпитването . По принцип  точността , и по-специално  валид­  
ността , с която  може  да се направи  оценка  на стойностите  на конце­  
нтрацията  на въздействие  (EC  x ), се повишава , когато  концентрацията  
на въздействие  е в обхвата  на изпитваните  стойности  на конце­  
нтрацията . Следва  да се избягват  екстраполации  за стойности , много  
по-ниски  от най-ниската  концентрация  на въздействие  или по-високи  
от най-високата  концентрация . За избора  на интервал  от концентрации , 
които  да се изпитат , е полезно  да се извърши  предварително  изпитване  
за определяне  на обхвата  (вж. точка  27). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1380
 
19. Ако трябва  да се направи  оценка  на EC  x , следва  да се направи  
изпитване  при най-малко  пет концентрации  и по три повторения  за 
всяка  концентрация . Във всички  случаи , препоръчва  се да се 
използват  достатъчно  стойности  на концентрациите  на изпитване , за 
да може  да се получи  удовлетворителна  оценка  чрез модела . Коеф­  
ициентът , с чиято  помощ  се получава  следващата  концентрация , не 
бива  да бъде  по-голям  от две (може  да се направи  изключение  в 
случаите , в които  кривата  на зависимостта  на отговора  от дозата  има 
твърде  слаб  наклон ). Броят  на повторенията  за всяко  третиране  може  да 
се намали , ако броят  на изпитваните  концентрации , които  предизвикват  
различен  отговор , се увеличи . Увеличаването  на броя  на повторенията  
или съкращаването  на интервала  между  концентрациите  обикновено  
води  до стесняване  на доверителния  интервал  на изпитването . Ако 
трябва  да се направи  оценка  на 10-дневното  преживяване  и растеж  
на ларвите , необходими  са допълнителни  повторения . 
Планиране  за оценка  на NOEC/LOEC  
20. Ако трябва  да се оценят  NOEC или LOEC, следва  да се направи  
изпитване  при пет концентрации  с най-малко  по четири  повторения , 
а коефициентът  между  стойностите  на концентрациите  не бива  да е по- 
голям  от две. Броят  на повторенията  следва  да е достатъчен  за 
осигуряване  на достатъчно  статистическа  мощност  за откриване  на 
разлика  от 20 % по отношение  на контролата  при равнище  на 
значимост  от 5 % (p = 0,05). По отношение  на скоростта  на развитие , 
обикновено  е подходящо  да се предприеме  дисперсионен  
анализ  (ANOVA), напр ., тест на Dunnett и тест на Williams 
(17)(18)(19)(20). По отношение  на коефициента  на имагиниране  може  
да се използва  тестът  на Cochran-Armitage, точният  тест на Fisher ( с 
корекция  на Bonferroni), или тестът  на Mantel-Haenszel.  
Гранично  изпитване  
21. Може  да се предприеме  гранично  изпитване  (с една  концентрация  за 
изпитване  и една  контрола ), ако не е наблюдавано  въздействие  в 
предварителното  изпитване  за определяне  на обхвата . Предназначението  
на граничното  изпитване  е да се извърши  изпитване  при достатъчно  
висока  концентрация , така че да се позволи  на лицата , взимащи  
решения , да отхвърлят  възможно  токсично  въздействие  на изпитваното  
вещество , като за прагова  стойност  се избира  концентрация , каквато  не 
се очаква  да се прояви  при каквато  и да било  ситуация . Препоръчва  се 
1 000 mg/kg ( сухо  тегло ). Обикновено  са необходими  най-малко  шест  
повторения  както  на третирането , така и на контрола . Следва  да се 
докаже  наличието  на достатъчно  статистическа  мощност  за откриване  
на разлика  от 20 % по отношение  на контролата  при равнище  на 
значимост  от 5 % (p = 0,05). При метричен  отговор  (скорост  на 
развитие  и тегло ), t-тестът  е подходящ  статистически  метод , ако 
данните  отговарят  на изискванията  на теста  (нормалност , хомогенни  
дисперсии ). Може  да се използва  и t-тест с нееднаква  дисперсия  или 
непараметричен  тест, напр . тест на Wilcoxon-Mann-Whithey, ако изис­  
кванията  не са изпълнени . По отношение  на коефициента  на 
имагиниране , точният  тест на Fisher е подходящ . 
ПРОЦЕДУРА  
Условия  на експозиция  
Приготвяне  на системата  седимент  с добавка  — вода  
22. За прилагане  на изпитваното  вещество  се препоръчва  процедурата  за 
добавяне , описана  в метод  за изпитване  В.8: „Токсичност  за червеи “ 
(14). Седиментите  с добавка  се поставят  в съдовете  и се добавя  водата  
до получаване  на обемно  съотношение  седимент  — вода  1:4 (вж. точки  
11 и 15). Дълбочината  на слоя  седимент  трябва  да бъде  между  1,5 и 
3 cm. За да се избегне  разделяне  на съставките  на седимента  и 
повторно  суспендиране  на фините  частици  по време  на добавянето  
на водата  за изпитването  във водната  колона , седиментът  може  да се 
покрие  с пластмасов  диск , докато  се налива  водата , веднага  след  което  
дискът  да се извади . Могат  да бъдат  подходящи  и други  устройства . 
23. Съдовете  за изпитването  следва  да бъдат  покрити  (напр . със стъклени  
пластинки ). Ако е необходимо , по време  на изследването  съдовете  се 
допълват  до първоначалния  обем , за да се компенсира  изпаряването  на 
водата . Това  следва  да се извърши , като се използва  дестилирана  или 
дейонизирана  вода , за да се избегне  образуването  на соли . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1381
 
Стабилизиране  
24. След  като е приготвена  системата  от седимент  с добавка  и вода , 
желателно  е да се даде  възможност  изпитваното  вещество  да се 
разпредели  между  течната  фаза  и седимента  (3)(4)(6)(13). За 
препоръчване  е това да стане  при температурата  и аерирането , 
използвани  при изпитването . Подходящото  време  за установяване  на 
равновесие  зависи  от седимента  и химикала  и може  да варира  от 
няколко  часа до дни, дори  до няколко  (4—5) седмици  в редки  
случаи . Тъй като това би довело  до разграждането  на много  
химикали , не се чака  установяване  на равновесие , а се препоръчва  
период  за уравновесяване , равен  на 48 часа. в края  на този допълн­  
ителен  период , следва  да се измери  концентрацията  на изпитваното  
вещество  във водата  над седимента , водата  в порите  и водата  в 
седимента , най-малкото  при най-високата  и при по-ниска  концентрация  
(вж. точка  38). Посочените  измервания  на изпитваното  вещество  дават  
възможност  за изчисляване  на масовия  баланс  и изразяване  на 
резултатите  въз основа  на измерените  концентрации . 
Добавяне  на организмите  за изпитването  
25. Четири  до пет дни преди  добавянето  на организмите  за изпитването  в 
съдовете  за изпитване , агломератите  от яйца  следва  да се извадят  от 
съдовете  за отглеждане  и да се сложат  в малки  съдове  в среда  за 
отглеждане . Може  да се използва  зряла  среда  от онази , в която  е 
отглеждана  изходната  култура , или прясно  приготвена  среда . Ако се 
използва  прясно  приготвена  среда , към средата  за отглеждане  се 
добавя  малко  количество  храна , т.е., зелени  водорасли  и/или няколко  
капки  филтрат  от суспензия  от фино  смляна  храна  за рибки  (вж. 
допълнение  2). Следва  да се използват  само  прясно  снесени  агломерати  
от яйца . Като  правило , ларвите  започват  да се излюпват  няколко  дни 
след снасянето  на яйцата  (2 до 3 за Chironomus riparius  при 20 °С, 1 до 4 
за Chironomus tentans  при 23 °С и Chironomus yoshimatsui  при 25 °С, а 
растежът  на ларвите  преминава  през четири  стадия , всеки  от които  трае 
от 4 до 8 дни. В изпитването  следва  да се използват  ларви  в първи  
стадий  на развитие  (2—3 или 1—4 дни след излюпването ). Стадият  на 
развитие  на насекомите  може  да се провери  чрез проверка  на 
широчината  на капсулата  на главата  (6). 
26. Двадесет  ларви  в първи  ларвен  стадий  се разпределят  на случаен  
принцип  във всеки  съд за изпитване , който  съдържа  седимент  с 
добавка  и вода , като се използва  пипета  с тъп край . Аерирането  на 
водата  трябва  да се спре , когато  ларвите  се добавят  в съдовете  за 
изпитване , и да остане  в това състояние  24 часа след  добавянето  (вж. 
точки  25 и 32). В зависимост  от използвания  план  на изпитването  (вж. 
точки  19 и 20), броят  на ларвите , използвани  за всяка  концентрация  е 
най-малко  60 за оценка  на точка  на концентрация , при която  се 
проявява  въздействие , и 80 за определяне  на NOEC.  
Концентрации  на изпитване  
27. За определяне  на интервала  от концентрации  за същинското  изпитване  
може  да бъде  от полза  извършването  на изпитване  за определяне  на 
обхвата . За тази цел се използва  серия  от много  раздалечени  конце­  
нтрации  на изпитваното  вещество . За да се осигури  гъстота  на 
хирономиди  на повърхността , еднаква  с използваната  в същинското  
изпитване , хирономидите  се експонират  на всяка  една  концентрация  
на изпитваното  вещество  за период , който  позволява  оценка  на 
подходящите  концентрации  за изпитването , като не са необходими  
повторения . 
28. Концентрациите  за същинското  изпитване  се определят  въз основа  на 
резултата  от изпитването  за определяне  на обхвата . Следва  да се 
използват  най-малко  пет концентрации , които  се избират , както  е 
описано  в точки  18—20.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1382
 
Контролни  съдове  
29. В изпитването  трябва  да се включи  и съответният  брой  контролни  
съдове  без изпитвано  вещество , но със седимент  (вж. точки  19 и 20), 
като се предвиди  съответният  брой  повторения . Ако за прилагането  на 
изпитваното  вещество  е използван  разтворител  (вж. точка  16), следва  
да се добави  и контролен  съд със седимент  с разтворител . 
Системи  за изпитване  
30. Използват  се статични  системи . Могат  да се използват  и полустатични  
системи  или такива  с периодично  или непрекъснато  обновяване  на 
водата  над седимента  в изключителни  случаи , например , когато  спец­  
ификациите  на качеството  на водата  станат  неподходящи  за организма , 
с който  се провежда  изпитването , или когато  се нарушава  химическото  
равновесие  (напр . нивото  на разтворения  кислород  е твърде  ниско , 
концентрацията  на продукти  от екскреция  е прекалено  висока , или от 
седимента  се просмукват  минерали  и влияят  на стойността  на рН и/или 
твърдостта  на водата ). Въпреки  това, други  методи  за подобряване  на 
качеството  на водата  над седимента , като напр . аериране , обикновено  
са достатъчни  и са за предпочитане . 
Храни  
31. Необходимо  е да се хранят  ларвите , за предпочитане  всеки  ден или 
най-малко  три пъти  седмично . Храната  за рибки  (суспензия  във вода  
или фино  смляна  храна , напр . Tetra-Min или Tetra-Phyll; вж. 
подробности  в допълнение  2) в количество  по 0,25—0,5 mg 
(0,35—0,5 mg за C. yoshimatui ) на ларва  на ден изглежда  подходяща  
за млади  ларви  в първите  10 дни. За по-възрастни  ларви  е необходима  
малко  повече  храна : 0,5—1 mg за ларва  за ден трябва  да е достатъчно  
за оставащото  време  на изпитването . Дажбата  храна  на всички  опитни  
и контролни  организми  следва  да се намали , ако е забелязано  развитие  
на гъбички , или ако сред  контролните  организми  има смъртност . Ако е 
невъзможно  да се спре  развитието  на гъбички , изпитването  трябва  да 
се повтори . когато  се изпитват  силно  адсорбиращи  вещества  (напр . с 
log K  ow > 5) или вещества , които  се свързват  ковалентно  със седимента , 
количеството  храна , необходима  за гарантиране  на преживяването  и 
нормалното  развитите  на организмите , може  да се добави  към приг­  
отвения  седимент  преди  периода  на стабилизация . За тази цел вместо  
храна  за рибки  трябва  да се използва  растителна  материя , например  да 
се добавят  0,5 % (сухо  тегло ) фино  смлени  листа  от коприва  (Urtica 
dioica ), черница  (Morus alba ), бяла  детелина  (Trifolium repens ), спанак  
(Spinacia oleracea ) или друг  растителен  материал  (Cerophyl  или алфа - 
целулоза ). 
Условия  за инкубиране  
32. Водата  над седимента  в съдовете  за изпитване  леко  се аерира , за предп­  
очитане  24 часа след  добавянето  на ларвите , като аерирането  
продължава  през цялото  време  на изпитването  (следва  да се вземат  
мерки  концентрацията  на кислород  да не пада  под 60 % от стойността  
на насищане  във въздух . Аерирането  се осъществява  с помощта  на 
стъклена  пипета  „Пастьор “, закрепена  на 2—3 cm над слоя  седимент  
(едно  или няколко  мехурчета  в секунда ). когато  се изпитват  летливи  
химикали , следва  да се разгледа  възможността  да не се аерира  
системата  седимент -вода . 
33. Изпитването  се провежда  при постоянна  температура  20 °С (± 2 °С). 
Препоръчваните  за C. tentans  и C. yoshimatui  температури  са съответно  
23 °C и 25 °C (± 2 ° С). Продължителността  на излагане  на светлина  е 
16 часа, а интензитетът  на светлината  трябва  да бъде  между  500 и 1 000 
lux. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1383
 
Продължителност  на експозицията  
34. Експозицията  започва  с поставянето  на ларвите  в съдовете  с 
изпитваното  вещество  и в контролните  съдове . Максималната  продъ­  
лжителност  на експозицията  е 28 дни за C. riparius  и C. yoshimatsui  и 
65 за C. tentans.  Ако насекомите  имагинират  по-рано , изпитването  
може  да се прекрати  след  най-малко  пет дни след  имагинирането  на 
последното  възрастно  насекомо  в контролните  съдове . 
Наблюдения  
Имагиниране  
35. Определя  се времето  на развитие  и общият  брой  на напълно  
имагинирали  мъжки  и женски  насекоми . Мъжките  лесно  се разпознават  
по перестите  си антени . 
36. Съдовете  за изпитване  се наблюдават  най-малко  три пъти  седмично , за 
да се оцени  визуално  дали  не е налично  ненормално  по отношение  на 
контролите  поведение  (напр . напускане  на седимента , необичайно  
плуване ). През  периода , когато  се очаква  имагинирането  на насек­  
омите , е необходимо  ежедневно  броене  на имагиниралите  индивиди . 
Полът  и броят  на напълно  имагиниралите  насекоми  се записва  всеки  
ден. След  разпознаване  насекомите  се изваждат  от съдовете . Всички  
агломерати  яйца , снесени  преди  завършването  на изпитването , се 
записват  и изваждат , за да се предотврати  повторно  въвеждане  на 
ларви  и седимента . Броят  на видимите  пашкули , които  не са 
имагинирали , също  се записва . В допълнение  5 са дадени  насоки  за 
измерването  на имагинирането . 
Растеж  и преживяване  
37. Ако трябва  да се получат  данни  за преживяването  и растежа  на ларвите  
след  10-ия ден, в началото  на изпитването  в него  се включват  допълн­  
ителни  съдове  за изпитване , така че да могат  да бъдат  използвани  по- 
късно . Седиментът  от тези допълнителни  съдове  се пресява  през сито  с 
размер  на отворите  250 μm, за да се задържат  ларвите . Критериите  за 
смърт  са неподвижност  или липса  на реакция  спрямо  механичен  
стимул . Липсващите  ларви  също  се смятат  за мъртви  (ларвите , които  
са умрели  в началото  на изпитването , може  да са били  разградени  от 
микроби ). Определя  се сухото  тегло  (без пепел ) на оцелелите  ларви  за 
съд и се изчислява  средното  индивидуално  сухо  тегло  за съд. Полезно  е 
да се определи  на кой стадий  на развитие  се намират  ларвите ; за целта  
може  да се използва  широчината  на капсулата  на главата  на всеки  
индивид . 
Аналитични  измервания  
Концентрация  на изпитваното  вещество  
38. Преди  започването  на изпитването  (т.е. преди  въвеждането  на ларвите ) 
се вземат  проби  от седимента  от най-малко  един  съд на третиране , за 
аналитично  определяне  концентрацията  на изпитваното  вещество  в 
седимента . Препоръчва  се, като минимум  да се анализират  проби  от 
водата  над седимента , водата  от порите  и седимента  в началото  (вж. 
точка  24) и в края  на изпитването , при най-високата  концентрация  и 
при по-ниска  такава . Посоченото  определяне  на концентрацията  на 
изпитваното  вещество  дава информация  за трансформациите / 
разпределението  му в системата  вода -седимент . 
39. Когато  се правят  междинни  измервания  (напр . на 7-ия ден) и ако 
анализът  изисква  големи  проби , които  не могат  да се вземат  от 
лабораторните  съдове , без да се повлияе  върху  системата  за изпитване , 
аналитичните  определяния  следва  да се извършват  върху  проби  от 
допълнителните  съдове  за изпитване , които  са третирани  по същия  
начин  (включително  присъствието  на организми  за изпитването ), но 
които  не се използват  за биологични  наблюдения . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1384
 
40. За изолиране  на интерстициалната  вода  се препоръчва  центрофугиране  
при 10 000 g и 4 °C в продължение  на 30 min. Ако обаче  изпитваното  
вещество  не се адсорбира  от филтрите , филтруването  също  е 
приемливо . В някои  случаи  не е възможно  да се анализират  конце­  
нтрациите  във водата  от порите , тъй като пробата  е с много  малък  
размер . 
Физични  и химични  параметри  
41. рН и температурата  на съдовете  за изпитване  следва  да се измерват  по 
подходящ  начин  (вж. точка  10). Твърдостта  и амонякът  се измерват  в 
контролните  съдове  и в един  съд за изпитване  при най-високата  конце­  
нтрация  в началото  и в края  на изпитването . 
ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Обработка  на резултатите  
42. Целта  на настоящото  изпитване  е да се определи  въздействието  на 
изпитваното  вещество  върху  скоростта  на развитие  и общия  брой  на 
достигналите  до стадий  на имаго  мъжки  и женски  хирономиди , а при 
10-дневното  изпитване  — въздействието  върху  преживяването  и 
теглото  на ларвите . Ако няма  указания , че съществуват  статистически  
значими  различия  между  половете  по отношение  на чувствителността  
към изпитваното  вещество , резултатите  за мъжките  и женските  
индивиди  могат  да се обединят  за целите  на статистическия  анализ . 
Разликите  в чувствителността  между  половете  могат  да се оценят  
статистически  с помощта  напр . на табличния  тест χ 2 -r × 2. 
Преживяването  на ларвите  и средното  индивидуално  сухо  тегло  за 
всеки  съд следва  да се определи  след  10 дни, ако това се изисква . 
43. Концентрациите , оказващи  въздействие , изразени  и основани  на сухото  
тегло , се изчисляват  за предпочитане  въз основа  на измерените  конце­  
нтрации  в седимента  в началото  на изпитването  (вж. точка  38).  
44. За да се изчисли  конкретна  прогнозна  стойност  на EC  50 или всяка  
друга  стойност  EC  х , статистическите  данни  за всеки  съд може  да се 
използват  като истински  повторения . При изчисляването  на 
доверителния  интервал  за всяка  стойност  на ЕС х , трябва  да се вземе  
предвид  варирането  между  съдовете , или трябва  да се покаже , че то е 
толкова  малко , че може  да се пренебрегне . Когато  моделът  е коригиран  
с помощта  на метода  на най-малките  квадрати , трябва  да се приложи  
трансформация  към статистическите  данни  за съд, за да се подобри  
хомогенността  на дисперсията . Стойностите  обаче  на ЕС х следва  да 
се изчисляват  след  като отговорът  бъде  трансформиран  обратно  в 
първоначалната  стойност . 
45. Когато  със статистическия  анализ  се цели  определяне  на NOEC/LOEC 
чрез проверка  на хипотези , варирането  между  съдовете  трябва  да се 
взема  под внимание , напр . с помощта  на „вложена “ ANOVA. Като  
алтернатива , при ситуации , в които  са налице  нарушения  на 
обичайните  допускания  на ANOVA, може  да се окажат  полезни  по- 
силни  изпитвания  (21).  
Съотношение  на имагиниране  
46. Стойностите  на съотношението  на имагиниране  (СИ) са данни  с две 
възможни  алтернативни  значения  и могат  да се анализират  с теста  на 
Cochran-Armitage, който  се прилага  регресивно , когато  се очаква  
монотонна  зависимост  между  дозата  и отговора , а тези данни  
потвърждават  очакванията . В противен  случай  може  да се използва  
точният  тест на Fisher или тестът  на Mantel-Haenszel с коригирани  по 
Bonferroni-Holm р-стойности . Ако между  повторения  при една  и съща  
концентрация  са налице  данни  за по-голямо  вариране , отколкото  би 
показало  биномно  разпределение  (често  наричан o „екстра  биномна “ 
вариация ), прилага  се устойчив  тест на Cochran-Armitage или точен  
тест на Fisher, както  се предлага  в (21).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1385
 
Сборът  от достигналите  до стадий  на имаго  насекоми  на съд, n e , се 
определя  и се разделя  на броя  на въведените  ларви  n a : 
ER ¼ n e 
n a 
където : 
ER = съотношение  на имагиниране  
n e = брой  на достигналите  до стадий  на имаго  насекоми  на съд 
n a = брой  на въведените  ларви  на съд 
47. Алтернативното  решение , което  е най-пригодно  за големи  извадки , 
когато  е налице  екстра  биномна  дисперсия , е да се третира  съотнош­  
ението  на имагиниране  като непрекъснат  отговор  и да се използват  
процедури  като тест на William, когато  се очаква  монотонна  
зависимост  между  дозата  и отговора  и тя съответства  на тези данни  
за съотношението  на имагиниране . Когато  е нарушена  монотонността , 
подходящ  е тестът  на Dunnett. Като  голяма  извадка  тук се определя  
такава , при която  броят  както  на имагиниралите , така и на неим­  
агиниралите  хирономиди  надвишава  пет за всяко  повторение  (съд). 
48. За да се приложат  методите  на ANOVA, стойностите  на СИ трябва  
първо  да се преобразуват  с трансформация  арксинус –корен  квадратен  
или с трансформация  Freeman-Tukey, за да се получи  приблизително  
нормално  разпределение  и да се изравнят  дисперсиите . По отношение  
на коефициента  на имагиниране  може  да се използва  тестът  на 
Cochran-Armitage, точният  тест на Fisher ( с корекция  на Bonferroni), 
или тестовете  на Mantel-Haenszel при използване  на абсолютни  
честоти . Трансформацията  арксинус –корен  квадратен  се прилага , като 
се вземе  реципрочната  стойност  на синус  (sin  –1 ) от квадратния  корен  на 
СИ. 
49. Стойностите  EC  x за съотношението  на имагиниране  се изчисляват  с 
помощта  на регресионен  анализ  (или напр . probit (22), logit, Weibull, 
подходящо  достъпно  срещу  заплащане  програмно  осигуряване , и т.н.). 
Ако регресионният  анализ  е неуспешен  (т.е., ако има по-малко  от два 
частични  отговора ), използват  се други  непараметрични  методи , напр . 
плаващо  средно  или проста  интерполация  
Скорост  на развитие  
50. Средното  време  на развитие  е средният  интервал  между  въвеждането  
на ларвите  (ден 0 на изпитването ) и имагинирането  на експеримент­  
алната  кохорта  насекоми . (За изчисляването  на действителното  време  
за развитие  следва  да се вземе  предвид  възрастта  на ларвите  в момента  
на въвеждане ). Скоростта  на развитие  е реципрочна  на времето  на 
развитие  (единица : 1/ден) и отговаря  на частта  от развитието  на 
ларвите , която  се извършва  за един  ден. Скоростта  на развитие  се 
предпочита  в оценката  на изследванията  на токсичността  на седимента , 
тъй като нейната  дисперсия  е по-ниска  и тя е по-хомогенна  и по-близка  
до нормалното  разпределение , отколкото  средното  време  на развитие . 
Поради  това могат  да се използват  мощни  параметрични  тестови  
процедури , в които  се използва  по-скоро  скоростта  на развитие , а не 
времето  за развитие . По отношение  на скоростта  на развитие  като 
непрекъснат  отговор , стойностите  на EC  x могат  да се оценят  с 
използване  на регресионен  анализ  (напр . (23), (24).  
51. В посочените  по-долу  статистически  тестове  се приема , че насекомите , 
наблюдавани  в деня  за инспекция  х, са достигнали  до стадия  на имаго  
в средата  на интервала  между  ден х и ден х–1 (l = дължина  на периода  
на инспекция , обикновено  един  ден). средната  скорост  на развитие  за 
съд (x) се изчислява  по формулата : 
x ¼ X  m 
i¼1 ƒ i x i 
n e ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1386
 
където : 
x: средна  скорост  на развитие  за съд 
i: индекс  на интервала  на инспекция  
m: максимален  брой  интервали  на инспекция  
ƒ i : брой  на насекомите , достигнали  до стадий  на имаго  през интервала  
на инспекция  i 
n e : общ брой  на насекомите , достигнали  до стадий  на имаго  в края  на 
експеримента  (= P ƒ i ) 
x i : скорост  на развитие  на насекомите , достигнали  до стадий  на имаго  
през интервала  на инспекция  i 
x i ¼ 1 
Ê 
day  i Ä 1 i 
2 Ì 
където : 
day  i : ден на инспекция  (дни след  прилагането ) 
l i : продължителност  на интервала  на инспекция  (дни, обикновено  1 
ден) 
Доклад  от изпитването  
52. В доклада  от изпитването  трябва  да се съобщава  най-малко  следната  
информация : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  и, където  е подходящо , физични  и химични  
свойства  (разтворимост  във вода , парно  налягане , коефициент  на 
разпределение  в почва  (или в седимент , ако такава  информация  е 
налице ), стабилност  във вода , и т.н.), 
— данни  за идентичността  на химикала  (общоприето  наименование , 
химично  наименование , номер  по CAS, и т.н.), включително  
чистота  и метод  за анализ  за количествено  определяне  на 
изпитваното  вещество . 
Животински  вид за изпитването : 
— използвани  в изпитването  животни : вид, научно  наименование , 
източник  на организмите  и условия  на отглеждане , 
— информация  за боравенето  с агломератите  от яйца  и ларвите , 
— възраст  на използваните  животни  при въвеждането  им в съдовете  за 
изпитване . 
Условия  на изпитването : 
— използван  седимент , т.е., естествен  или приготвен  седимент , 
— за естествения  седимент  — местоположение  и описание  на мястото  
на вземане  на пробата , включително , ако е възможно , информация  
за замърсяването  в миналото ; характеристики : рН, съдържание  на 
органичен  въглерод , съотношение  C/N и зърнометричен  състав  (ако 
е подходящо ), 
— подготовка  на синтетичния  седимент : съставки  и характеристики  
(съдържание  на органичен  въглерод , рН, влажност , и т.н. в 
началото  на изпитването ), 
— подготовка  на водата  за изпитването  (ако се използва  възстановена  
вода ) и характеристики  на водата  (концентрация  на кислород , рН, 
проводимост , твърдост , и т.н. в началото  на изследването ), 
— дълбочина  на седимента  и на водата  над седимента , 
— обем  на водата  над седимента  и на водата  в порите ; тегло  на 
влажния  седимент  съответно  със и без водата  в порите , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1387
 
— съдове  за изпитване  (материал  и размери ), 
— методи  за обогатяване  на седимента : използвани  концентрации , 
брой  на повторенията  и употреба  на разтворител , ако има такава  
употреба , 
— равновесна  фаза  на стабилизация  на системата  седимент  с добавка  
— вода : продължителност  и условия , 
— инкубационни  условия : температура , редуване  на светлина  и 
тъмнина , светлинен  интензитет , аериране  (периодичност  и интенз­  
итет), 
— подробна  информация  за храненето , включително  вида  на храната , 
приготвянето  и режима  на хранене . 
Резултати : 
— номинални  концентрации  на изпитване , измерени  концентрации  на 
изпитване , резултати  от всички  анализи  за определяне  на конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  в съдовете  за изпитване , 
— качество  на водата  в съдовете  за изпитване , т.е., рН, температура , 
разтворен  кислород , твърдост  и амоняк , 
— замяна  на изпарилата  се от съда  за изпитване  вода , ако има такава , 
— брой  на достигналите  до стадий  на имаго  мъжки  и женски  насекоми  
за съд и за ден, 
— брой  ларви , недостигнали  до стадий  на имаго  за съд, 
— средно  индивидуално  сухо  тегло  на ларвите  за съд, и за стадий , ако 
е подходящо , 
— процент  на достигане  до стадий  на имаго  за повторение  и за конце­  
нтрация  на изпитване  (общо  за мъжките  и женските  насекоми ), 
— средна  скорост  на развитие  на достигналите  до стадий  на имаго  
насекоми  за повторение  и за концентрация  на изпитване  (общо  за 
мъжките  и за женските  насекоми ), 
— предварителни  оценки  на стойностите  на крайни  точки  за токсич­  
ността , напр . EC  x (и свързаните  с тях доверителни  интервали ), 
LOEC и/или NOEC, както  и статистическите  методи , използвани  
за тяхното  определяне , 
— обсъждане  на резултатите , включително  всякакво  влияние  върху  
резултата  от изпитването , вследствие  на отклонения  от настоящия  
метод  за изпитване . 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) BBA (1995). Long-term toxicity test with Chironomus riparius: Deve ­
lopment and validation of a new test system. Edited by M. Streloke and 
H.Köpp. Berlin 1995.  
(2) Fleming R  et al.  (1994). Sediment Toxicity Tests for Poorly Water-Soluble 
Substances. Final Report to them European Commission. Report No: EC 3738. August 1994. WRc, UK.
 
(3) SETAC (1993). Guidance Document on Sediment toxicity Tests and 
Bioassays for Freshwater and Marine Environments. From the WOSTA Workshop held in the Netherlands.
 
(4) ASTM International/E1706-00 (2002). Test Method for Measuring the 
Toxicity of Sediment-Associated Contaminants with Freshwater Inverteb ­
rates. pp 1125-1241. In ASTM International 2002 Annual Book of Stan ­
dards. Volume 11.05. Biological Effects and Environmental Fate;Biotech ­
nology; Pesticides. ASTM. International, West Conshohocken, PA.  
(5) Environment Canada (1997). Test for Growth and Survival in Sediment 
using Larvae of Freshwater Midges ( Chironomus tentans  or Chironomus 
riparius ). Biological Test Method. Report SPE 1/RM/32. December 1997.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1388
 
(6) US-EPA (2000). Methods for Measuring the Toxicity and Bioaccumulation 
of Sediment-associated Contaminants with Freshwater Invertebrates. 
Second edition. EPA 600/R-99/064. March 2000. Revision to the first edition dated June 1994.
 
(7) US-EPA/OPPTS 850.1735. (1996): Whole Sediment Acute Toxicity Inver ­
tebrates.  
(8) US-EPA/OPPTS 850.1790. (1996): Chironomid Sediment toxicity Test.  
(9) Milani D, Day KE, McLeay DJ, and Kirby RS (1996). Recent intra- and 
inter-laboratory studies related to the development and standardisation of Environment Canada’s biological test methods for measuring sediment toxicity using freshwater amphipods  (Hyalella azteca)  and midge larvae  
(Chironomus riparius).  Technical Report. Environment Canada. National 
Water Research Institute. Burlington, Ontario, Canada.
 
(10) Sugaya Y (1997). Intra-specific variations of the susceptibility of insec ­
ticides  in Chironomus yoshimatsui . Jp. J. Sanit. Zool. 48 (4): 345-350.  
(11) Kawai K (1986). Fundamental studies on Chironomid allergy. I. Culture 
methods of some Japanese Chironomids (Chironomidae, Diptera). Jp. J. 
Sanit. Zool. 37(1): 47-57.  
(12) OECD (2000). Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of 
Difficult Substances and Mixtures. OECD Environment, Health and Safety Publications, Series on Testing and Assessment № 23.
 
(13) Environment Canada (1995). Guidance Document on Measurement of 
Toxicity Test Precision Using Control Sediments Spiked with a 
Reference Toxicant. Report EPS 1/RM/30. September 1995.  
(14) Метод  за изпитване  В.8 от настоящото  приложение , Токсичност  за 
червеи  
(15) Suedel BC and JH Rodgers (1994). Development of formulated reference 
sediments for freshwater and estuarine sediment testing. Environ. Toxicol. 
Chem. 13: 1163-1175.  
(16) Naylor C and C Rodrigues (1995). Development of a test method for 
Chironomus riparius using a formulated sediment. Chemosphere 31: 
3291-3303.  
(17) Dunnett CW (1964). A multiple comparisons procedure for comparing 
several treatments with a control. J. Amer. Statis. Assoc., 50: 1096-1121.  
(18) Dunnett CW (1964). New tables for multiple comparisons with a control. 
Biometrics, 20: 482-491.  
(19) Williams DA (1971). A test for differences between treatment means when 
several dose levels are compared with a zero dose control. Biometrics, 27: 
103-117.  
(20) Williams DA (1972). The comparison of several dose levels with a zero 
dose control. Biometrics, 28: 510-531.  
(21) Rao JNK and Scott AJ (1992). A simple method for the analysis of 
clustered binary data. Biometrics 48: 577-585.  
(22) Christensen ER (1984). Dose-response functions in aquatic toxicity testing 
and the Weibull model. Water Research 18: 213-221.  
(23) Bruce and Versteeg (1992). A statistical procedure for modelling 
continuous toxicity data. Environmental Toxicology and Chemistry 11: 1485-1494.
 
(24) Slob W (2002). Dose-response modelling of continuous endpoints. Toxicol. 
Sci. 66: 298-312.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1389
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
За целите  на настоящия  метод  за изпитване  са използвани  следните  
определения : 
Приготвен  седимент  или възстановен , изкуствен  или синтетичен  седимент  
е смес  от материали , използвани  за симулиране  на физичните  съставки  на 
естествения  седимент . 
Вода  над седимента  е водата , която  се намира  над седимента  в съда  за 
изпитване . 
Интерстициална  вода , или вода  от порите  е водата , която  заема  
пространството  между  частиците  на почвата  и седимента . 
Седимент  с добавка  е седимент , към който  е добавено  изпитваното  
вещество . 
Изпитван  химикал : всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1390
 
Допълнение  2 
Препоръки  за отглеждане  на Chironomus riparius  
1. Ларвите  на Chironomus  могат  да се отглеждат  в кристализатори  или в 
по-големи  контейнери . На дъното  на контейнера  се разпръсква  фин 
кварцов  пясък  на тънък  слой  с дебелина  5 до 10 mm. Има 
информация , че кизелгурът  (напр . Merck, арт. 8117) също  е 
подходящ  субстрат  (достатъчен  е по-тънък  слой  от само  няколко  
mm). След  това се добавя  подходяща  вода  до достигане  на 
дълбочина  от няколко  сm. Долива  се вода , ако е необходимо , за да 
се компенсира  загубата  от изпаряване  и за да се предотврати  изсуш­  
аването . Водата  може  да се сменя , ако е необходимо . Следва  да се 
осигури  умерено  аериране . Съдовете  за отглеждане  на ларвите  следва  
да се поставят  в подходяща  клетка , с която  да се предотврати  
отлитането  на достигналите  до стадий  на имаго  възрастни  насекоми . 
Клетката  следва  да бъде  с достатъчни  размери , за да се даде  
възможност  за оформяне  на рой от получените  възрастни , защото  в 
противен  случай  може  да не се стигне  до копулация  (най-малко  около  
30 × 30 × 30 сm.). 
2. Клетките  следва  да се държат  при стайна  температура  или в 
помещение  с постоянни  характеристики  на средата  при 20 ± 2 ° С 
със светъл  период  от 16 часа (интензитет  около  1 000 lux) и 8 часа 
тъмнина . Докладвано  е, че относителна  влажност , по-ниска  от 60 %, 
може  да възпрепятства  размножаването . 
Вода  за разреждане  
3. Може  да се използва  всяка  подходяща  естествена  или синтетична  
вода . Практиката  е да се използва  вода  от кладенец , чешмяна  вода , 
от която  е отстранен  хлорът , и изкуствена  среда  (напр . среда  Elendt 
„M4“ или „M7“). Преди  употреба  водата  трябва  да бъде  аерирана . Ако 
е необходимо , водата  за отглеждане  може  да се обновява , като се 
внимателно  се излива  или изсмуква  използваната  вода  от съдовете  
за отглеждане , без да се унищожават  тръбичките  на ларвите . 
Хранене  на ларвите  
4. Ларвите  на Chironomus  трябва  да се хранят  с храна  за риба  на люспи  
(Tetra Min®, Tetra Phyll® или друга  подобна  търговска  марка  храна  за 
риба ) по около  250 mg на съд дневно . Храната  може  да се дава като 
сух смлян  прах  или като суспензия  във вода : 1,0 g храна  във вид на 
люспи  се добавя  към 20 ml вода  за разреждане  и се разбърква , за да 
образува  хомогенна  смес . Така  получената  смес  може  да се дава в 
количество  от около  5 ml на съд дневно  (като се разбърква  преди  
употреба ). По-старите  ларви  могат  да получават  повече  храна . 
5. Количеството  храна  се определя  съобразно  качеството  на водата . Ако 
средата  за отглеждане  стане  мътна , количеството  храна  трябва  да се 
намали . Добавянето  на храна  се следи  внимателно . Даването  на 
прекалено  малко  храна  ще предизвика  миграция  на ларвите  в обема  
на водата , а твърде  голямо  количество  ще предизвика  засилване  на 
дейността  на микробите  и по-ниски  нива  на кислорода . И двете  обсто­  
ятелства  могат  да доведат  до по-ниска  скорост  на развитие . 
6. Могат  също  да се добавят  и клетки  от някои  зелени  водорасли  (напр . 
Scenedesmus subspicatus , Chlorella vulgaris ), когато  се подготвят  нови  
съдове  за отглеждане . 
Хранене  на имагиниралите  възрастни  
7. Някои  експериментатори  изказват  идеята , че тампон  от памук , напоен  
с наситен  разтвор  на захароза , може  да се използва  за хранене  на 
достигналите  до стадий  на имаго  възрастни . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1391
 
Имагиниране  
8. При температура  от 20 °С ± 2 °С след  приблизително  13—15 дни от 
съдовете  за отглеждане  на ларви  ще започнат  да имагинират  
възрастните  насекоми . Мъжките  лесно  се разпознават  по това, че 
имат  перести  антени . 
Агломерати  от яйца  
9. Щом  в съдовете  за развъждане  има наличие  на възрастни  насекоми , 
всички  съдове  за отглеждане  трябва  да се проверяват  три пъти  
седмично  за наличие  на желеобразни  маси  яйца . Ако са налице , 
масите  яйца  следва  да бъдат  внимателно  отстранени . Те следва  да се 
преместят  в малко  блюдо , съдържащо  проба  от водата  за развъждане . 
Масите  яйца  се използват  за създаване  на нов съд за отглеждане  (напр . 
2—4 маси  яйца /съд) или се използват  в изпитванията  за токсичност . 
10. След  2—3 дни следва  да се излюпят  ларви  от първи  стадий . 
Създаване  на нови  съдове  за отглеждане  
11. След  като е положено  началото  на отглеждането , следва  да е 
възможно  да се създава  нов съд за отглеждане  на ларви  всяка  
седмица  или по-рядко , в зависимост  от изискванията  на изпитването , 
като старите  съдове  се изваждат  от изпитването , след  като 
преобразяването  на ларвите  в имаго  завърши . Използването  на тази 
система  позволява  редовно  получаване  на възрастни  насекоми  с 
минимални  грижи  за управление . 
Приготвяне  на разтвори  за изпитване  „М4“ и „М7“ 
12. Среда  „М4“ е описана  в Elendt (1990). Среда  „М7“ се приготвя  като 
„М4“, освен  по отношение  на указаните  в таблица  1 вещества , при 
които  се използват  концентрации , четири  пъти  по-ниски , отколкото  
използваните  в „М4“. Подготвя  се публикация  за среда  „М7“ 
(Elendt, лично  съобщение ). Разтворът  за изпитване  не трябва  да се 
приготвя  според  Elendt and Bias (1990) тъй като концентрациите  на 
NaSiO  3 ·5 H  2 O, NaNO  3 , KH  2 PO 4 и K 2 HPO  4 , посочени  за приготвянето  
на изходния  разтвор , не са подходящи . 
Приготвяне  на среда  „М7“ 
13. Всеки  изходен  разтвор  (I) се приготвя  отделно  и с изходните  
разтвори  (I) се приготвя  комбиниран  изходен  разтвор  (II) (вж. 
таблица  1). За получаване  на среда  „М7“ 50 ml от комбинирания  
изходен  разтвор  (II) и посочените  в таблица  2 количества  от 
изходните  разтвори  на макро  храни  се допълват  до 1 литър  с 
дейонизирана  вода . Приготвя  се изходен  разтвор  на витамини , като 
се добавят  трите  витамина , както  е посочено  в таблица  3, към 
дейонизирана  вода , и 0,1 ml от комбинирания  изходен  разтвор  на 
витамини  се добавя  към крайната  среда  „М7“ малко  преди  употреба . 
(Стандартният  разтвор  на витамини  се съхранява  замразен  на малки  
аликвотни  части ). Средата  се аерира  и стабилизира . 
ПРЕПРАТКИ  
BBA (1995). Long-term toxicity test with  Chironomus riparius : Development 
and validation of a new test system. Edited by M. Streloke and H.Köpp. Berlin 
1995.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1392
 
Таблица  1 
Изходни  разтвори  на микроелементи  за среди  М4 и М7 
Изходни  разтвори  (I) Количество  
(mg), 
разреждано  до 1 
l с дейонизирана  
вода  За приготвянето  на комбинирания  
изходен  разтвор  (II): смесват  се 
следните  количества  (ml) от всеки  
от изходните  разтвори  (I) и се 
долива  до 1 литър  дейонизирана  
вода  Крайни  концентрации  в 
разтворите  за изпитване  (mg/l) 
M4 M7 M4 M7  
H 3 BO 3 ( 1 ) 57 190 1,0 0,25 2,86 0,715 
MnCl  2 · 4H  2 O (  1 ) 7 210 1,0 0,25 0,361 0,090 
LiCl (  1 ) 6 120 1,0 0,25 0,306 0,077 
RbCl (  1 ) 1 420 1,0 0,25 0,071 0,018 
SrCl  2 · 6H  2 O (  1 ) 3 040 1,0 0,25 0,152 0,038 
NaBr (  1 ) 320 1,0 0,25 0,016 0,004 
Na 2 MoO  4 · 2H  2 O (  1 ) 1 260 1,0 0,25 0,063 0,016 
CuCl  2 · 2H  2 O (  1 ) 335 1,0 0,25 0,017 0,004 
ZnCl  2 260 1,0 1,0 0,013 0,013 
CaCl  2 · 6H  2 O 200 1,0 1,0 0,010 0,010 
KI 65 1,0 1,0 0,0033 0,0033 
Na 2 SeO  3 43,8 1,0 1,0 0,0022 0,0022 
NH  4 VO  3 11,5 1,0 1,0 0,00058 0,00058 
Na 2 EDTA · 2H  2 O (  1 ) ( 2 ) 5 000 20,0 5,0 2,5 0,625 
FeSO  4 · 7H  2 O (  1 ) ( 2 ) 1 991 20,0 5,0 1,0 0,249  
( 1 ) Веществата  се различават  в М4 и М7, както  е посочено  по-горе. 
( 2 ) Разтворите  се приготвят  отделно , изливат  се заедно  и незабавно  се автоклавират . 
Таблица  2 
Изходни  разтвори  на макрохранителни  вещества  за среди  М4 и М7 
Количество , 
разреждано  до 1 l с 
дейонизирана  вода  
(mg) Изходни  разтвори  на 
макрохранителни  
вещества , добавяни  за 
приготвяне  на среди  М4 и 
М7 
(ml/l) Крайни  конце­  
нтрации  в разтвори  
за изпитване  М4 и 
М7 
(mg/l)  
CaCl  2 · 2H  2 O 293 800 1,0 293,8 
MgSO  4 · 7H  2 O 246 600 0,5 123,3 
KCl 58 000 0,1 5,8 NaHCO
 3 64 800 1,0 64,8 
NaSiO  3 · 9H  2 O 50 000 0,2 10,0 
NaNO  3 2 740 0,1 0,274 
KH  2 PO 4 1 430 0,1 0,143 
K 2 HPO  4 1 840 0,1 0,184  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1393
 
Таблица  3 
Изходни  разтвори  на витамини  за среди  М4 и М7. Събират  се всички  три разтвора  на 
витамини , за да се приготви  един  общ изходен  разтвор  на витамини  
Количество , 
разреждано  до 1 l с 
дейонизирана  вода  
(mg) Количество  изходен  разтвор  
на витамини , добавяно  за 
приготвяне  на среди  М4 и 
М7 
(ml/l) Крайни  концентрации  
в разтвори  за 
изпитване  М4 и М7 
(mg/l)  
Тиаминхидрохлорид  750 0,1 0,075 
Цианокобаламин  (B12) 10 0,1 0,0010 
Биотин  7,5 0,1 0,00075  
ПРЕПРАТКИ  
Elendt, B.P. (1990). Selenium Deficiency in Crustacean.  Protoplasma  154: 25- 
33. 
Elendt, B.P. & W.-R. Bias (1990). Trace Nutrient Deficiency in  Daphnia magna  
Cultured in Standard Medium for Toxicity Testing. Effects on the Optimization of Culture Conditions on Life History Parameters of  D. magna . Water Research  
24 (9): 1157-1167.
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1394
 
Допълнение  3 
ПРИГОТВЯНЕ  НА СИНТЕТИЧЕН  СЕДИМЕНТ  
Състав  на седимента  
Съставът  на синтетичния  седимент  е, както  следва : 
Съставка  Характеристики  Процент  от сухото  
тегло  на седимента  
Торф  Торф  от торфен  мъх, с рН 
възможно  най-близо  до 
5,5—6,0 без видими  
остатъци  от растения  и 
фино  смлян  (размер  на 
частиците  ≤ 1 mm) и 
изсушен  на въздух  4 – 5 
Кварцов  пясък  Размер  на зърната : > 50 % 
от частиците  следва  да 
бъдат  в интервала  
50—200 μm 75 – 76 
Каолин  Съдържание  на каолинит  ≥ 
30 % 20 
Органичен  въглерод  Коригира  се чрез добавяне  
на торф  и пясък  2 (± 0,5) 
Калциев  карбонат  CaCO  3 на прах , химически  
чист  0,05 - 0,1 
Вода  Проводимост  ≤ 10 μЅ/cm 30 - 50  
Приготвяне  
Торфът  се изсушава  с въздух  и се смила  на фин прах . Приготвя  се 
суспензия  от желаното  количество  торф  на прах  в дейонизирана  вода , 
като се използва  високопроизводително  хомогенизиращо  устройство . Като  
се използва  CaCO  3 , рН на суспензията  се коригира  до 5,5 ± 0,5. 
Суспензията  се аклиматизира  най-малко  два дни при 20 °С ± 2 °С, като 
се разбърква  леко , за да се стабилизира  рН и да се създаде  стабилна  
микробна  среда . Отново  се измерва  рН, което  трябва  да бъде  6,0 ± 0,5. 
След  това торфената  суспензия  се смесва  с другите  съставки  (пясък  и 
каолин ) и дейонизирана  вода , за да се получи  хомогенен  седимент  със 
съдържание  на вода  в интервала  30—50 % от сухото  тегло  на седимента . 
Измерва  се отново  рН на крайната  смес  и, ако е необходимо , се коригира  до 
6,5—7,5 с CaCO  3 . Вземат  се проби  от седимента , за да се определи  сухото  
тегло  и съдържанието  на органичен  въглерод . Освен  това, препоръчва  се 
преди  използването  му в изпитване  за токсичност  за хирономиди , 
изкуственият  седимент  да бъде  аклиматизиран  в продължение  на седем  
дни при същите  условия , при които  ще се провежда  изпитването . 
Съхранение  
Сухите  съставки  за приготвянето  на изкуствения  седимент  могат  да се 
съхраняват  в сухо  и хладно  място  при стайна  температура . Приготвеният  
(влажен ) седимент  не трябва  да се съхранява  преди  употребата  му в 
изпитване . Той следва  да се употребява  незабавно  след  7-дневния  период  
за аклиматизация , с който  завършва  приготвянето  му. 
ПРЕПРАТКИ  
Глава  В.8 от настоящото  приложение , Токсичност  за земни  червеи . 
Meller M, Egeler P, Rombke J, Schallnass H, Nagel R, Streit B (1998). 
Short-term Toxicity of Lindane, Hexachlorobenzene and Copper Sulfate on Tubificid Sludgeworms (Oligochaeta) in Artificial Media. Ecotox. and Environ. Safety 39: 10-20.
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1395
 
Допълнение  4 
Химични  характеристики  на приемлива  вода  за разреждане  
Вещество  Концентрации  
Твърди  частици  < 20 mg/l 
Общ  органичен  въглерод  < 2 mg/l 
Нейонизиран  амоняк  < 1 μg/l 
Твърдост , изразена  като CaCO  3 < 400 mg/l (*) 
Остатъчен  хлор  < 10 μg/l 
Общо  органофосфорни  пестициди  < 50 ng/l 
Общо  органохлорни  пестициди  плюс  поли­  
хлорирани  бифенили  < 50 ng/l 
Общ  органичен  хлор  < 25 ng/l  
(*) Трябва  обаче  да се отбележи , че ако се предполага  взаимодействие  между  йоните , 
от които  произтича  твърдостта , и изпитваното  вещество , следва  да се използва  
вода  с по-ниска  твърдост  (и затова  в този случай  не трябва  да се използва  среда  
„Elendt M4“).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1396
 
Допълнение  5 
Насоки  за наблюдение  на имагинирането  на ларвите  на хирономидите  
Върху  бехеровите  чаши , в които  се провежда  изпитването , се поставят  
уловители  за достигнали  до стадия  на имаго  насекоми . Уловителите  са 
необходими  от 20-ия ден на изпитването  до края  му. Примерно  устройство  
на уловителя  е показано  по-долу :
 
A: найлонов  екран  
B: обърнати  пластмасови  панички  
C: чаша  за експозиция  без улей  D: екранирани  отвори  за смяна  на водата  
E: вода  
F: седимент  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1397
 
В. 28.  ИЗПИТВАНЕ  ЗА ТОКСИЧНОСТ  ЗА ХИРОНОМИДИ  В 
СИСТЕМА  ВОДА –СЕДИМЕНТ  С ИЗПОЛЗВАНЕ  НА ВОДА  С 
ДОБАВКА  
УВОД  
1. Настоящият  метод  за изпитване  е еквивалентен  на ОИСР  ТG 219 
(2004). Настоящият  метод  за изпитване  е предназначен  за оценка  на 
въздействието  на продължителната  експозиция  на химикали  на 
живеещи  в седимента  ларви  на пресноводното  двукрило  Chironomus  
sp. Методът  се основава  основно  на насоките  за изпитване  на ВВА  с 
използване  на изпитвателна  система  седимент -вода  с изкуствена  почва  
и сценарий  на експозиция  чрез водния  обем  (1). Методът  също  така 
взима  под внимание  съществуващите  протоколи  за изпитвания  на токс­  
ичността  за Chironomus riparius  и Chironomus tentans ,.разработени  в 
Европа  и Северна  Америка  (2)(3)(4)(5)(6)(7)(8) и подложени  на 
кръгово  изпитване  (1)(6)(9). Могат  да се използват  и други  добре  
документирани  видове  хирономиди , напр . Chironomus yoshimatsui  
(10)(11).  
2. Сценарият  за експозиция , който  се използва  в настоящия  метод  за 
изпитване , е добавяне  към вода  на изпитвано  вещество . Изборът  на 
подходящ  сценарий  за експозиция  зависи  от предвиденото  приложение  
на изпитването . Със сценария  с експозиция  чрез водата , при който  
добавката  е към водата  над седимента , се цели  да се симулира  
разнасяне  на пестицид  и обхваща  началната  пикова  стойност  на конце­  
нтрациите  във водата  в порите . Той е полезен  също  и за други  типове  
експозиция  (в това число  разливане  на химикали ), освен  процесите  на 
натрупване , които  продължават  по-дълго  от времетраенето  на 
изпитването . 
3. Веществата , които  трябва  да бъдат  изпитани  с помощта  на организми , 
живеещи  в седимента , обикновено  са задържат  в тази естествена  среда  
за дълги  периоди  от време . Живеещите  в седимента  организми  могат  да 
бъдат  засегнати  по различни  начини . Относителната  важност  на всеки  
път на експозиция  и времето , необходимо  за всеки  от тях да способства  
за общото  токсично  въздействие , зависят  от физико –химичните  
свойства  на съответния  химикал . За силно  адсорбиращите  химикали  
(напр . с log K  ow > 5) или за вещества , които  образуват  ковалентна  
връзка  със седимента , поглъщането  на замърсена  храна  може  да бъде  
значим  път на експозиция . За да не се подцени  токсичността  на силно  
липофилните  вещества , може  да се разгледа  възможността  за добавяне  
на храна  в седимента , преди  да бъде  приложено  изпитваното  вещество . 
За да се вземат  предвид  всички  възможни  пътища  на експозиция , 
настоящият  метод  за изпитване  е ориентиран  главно  към експозицията  
в дългосрочен  план . Продължителността  на изпитването  е от 20 до 28 
дни за C. riparius  и C. yoshimatsui  и 28—65 за C. tentans.  Ако за 
определена  специфична  цел се изискват  данни  в краткосрочен  план , 
за да се изследва  например  въздействието  на нестабилни  химикали , 
допълнителните  повторения , включени  в изпитването , могат  да се 
прекратят  след  период  от десет  дни. 
4. Измерваните  крайни  точки  са общият  брой  на имагиниралите  
възрастни  насекоми  и времето , което  е изтекло  до достигането  на 
стадия  на имаго . Ако са необходими  допълнителни  данни  в крат­  
косрочен  план , препоръчва  се измерването  на преживяването  и 
растежа  на ларвите  да се извършва  едва след  десетдневен  период , 
като се използват , ако е необходимо , допълнителни  повторения . 
5. Препоръчва  се употребата  на приготвен  седимент . Приготвеният  
седимент  има някои  преимущества  пред  естествените  седименти : 
— намалява  се експерименталното  вариране , тъй като приготвеният  
седимент  играе  ролята  на „стандартна  матрица “ и отпада  необход­  
имостта  да се намират  източници  на незамърсен  и чист  седимент , 
— изпитванията  могат  да започнат  по всяко  време , без да се влияят  от 
сезонната  променливост  на включения  в изпитването  седимент , и 
без да се налага  седиментът  да се подлага  на предварителна  подг­  
отовка  за отстраняване  на собствената  му фауна ; използването  на 
приготвен  седимент  намалява  и разходите  във връзка  със 
събирането  в полеви  условия  на достатъчно  количество  седимент  
за рутинните  изпитвания , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1398
 
— използването  на приготвен  седимент  позволява  сравняване  на токс­  
ичността  и съответно  подреждане  на веществата : за много  
химикали  данните  за токсичността  от изпитвания  с естествени  и с 
изкуствени  седименти  са съпоставими  (2). 
6. Определенията , които  са използвани , са дадени  в допълнение  1. 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
7. Ларви  на хирономиди  в първи  ларвен  стадий  се излагат  на обхват  от 
концентрации  на изпитваното  вещество  в системи  седимент  — вода . 
Изпитването  започва  с въвеждането  на ларви  в първи  ларвен  стадий  в 
изпитвателните  бехерови  чаши , съдържащи  системата  седимент  — 
вода , и добавяне  по-късно  на изпитваното  вещество  във водата . В 
края  на изпитването  се измерва  имагинирането  на хирономидите  и 
скоростта  им на развитие . Може  също  да се измери  и преживяването  
и теглото  на ларвите  след  10 дни, ако е необходимо  (като се използват  
допълнителни  повторения , както  е подходящо ). Данните  се анализират , 
като се използва  регресионен  модел , за да се оцени  концентрацията , 
която  предизвиква  намаляване  с х % на имагинирането  или на 
преживяването  на ларвите  или растежа  им (напр . EC  15 , EC  50 и т.н.) 
или като се използва  проверка  на статистическа  хипотеза  за определяне  
на NOEC/LOEC. Последното  изисква  сравнение  на стойностите , при 
които  се наблюдава  въздействие , с контролните  стойности , като се 
използват  статистически  тестове . 
ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНОТО  ВЕЩЕСТВО  
8. Разтворимостта  във вода  и налягането  на парите  на изпитваното  
вещество , измереното  или изчисленото  му разпределение  в седимента  
и стабилността  му във вода  следва  да са известни . Следва  да е на 
разположение  и надежден  метод  за анализ  за количествено  определяне  
на веществото  във водата  над седимента , водата  в порите  и седимента , 
чиито  точност  и граница  на откриваемост  са известни  и отчетени . 
Полезна  информация  са структурната  формула  и чистотата  на 
изпитваното  вещество . Информация  за химическата  трансформация  
на изпитваното  вещество  (разсейване , абиотично  и биотично  
разграждане  и т.н.) също  е полезна . Допълнителни  насоки  за 
изпитване  на вещества  с физикохимични  свойства , които  ги правят  
трудни  за изпитване , са дадени  в (12).  
РЕФЕРЕНТНИ  ХИМИКАЛИ  
9. Референтните  химикали  може  да се изпитват  периодично  като средство  
за потвърждение , че протоколът  за изпитване  и условията  на изпитване  
са надеждни . Могат  да се посочат  като пример  следните  референтни  
токсични  вещества , използвани  успешно  в кръгови  изпитвания  и в 
изследвания  за потвърждаване : линдан , трифлуралин , пентахлорфенол , 
кадмиев  хлорид  и калиев  хлорид  (1)(2)(5)(6)(13).  
ВАЛИДНОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
10. За да е валиден  тестът , прилагат  се следните  условия : 
— в края  на изпитването  имагинирането  в контролните  експерименти  
трябва  да бъде  поне  70 % (1)(6),  
— имагинирането  на C. riparius  и C. yoshimatsui  в контролните  съдове  
трябва  да настъпва  между  12 и 23 дни след  въвеждането  им в 
съдовете ; за C. tentans  е необходим  период  от 20 до 65 дни, 
— в края  на изпитването  следва  да се измери  рН и концентрацията  на 
разтворения  кислород  във всички  съдове . Концентрацията  на 
разтворен  кислород  трябва  да бъде  поне  60 % от стойността  на 
насищане  на въздуха  при използваната  температура , а рН на 
водата  над седимента  следва  да бъде  в обхвата  6—9 във всички  
съдове , в които  се извършва  изпитването , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1399
 
— температурата  на водата  не трябва  да варира  с повече  от ± 1 °С и 
може  да се контролира  в изотермично  помещение , като в този 
случай  температурата  трябва  да се потвърждава  на подходящи  
интервали . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Съдове  за извършване  на изпитването  
11. Изпитването  се извършва  в стъклени  бехерови  чаши  с вместимост  600 
ml и диаметър  8 cm. Подходящи  са и други  съдове , но те следва  да 
осигуряват  подходяща  дълбочина  на водата  над седимента  и на самия  
седимент . Площта  на седимента  трябва  да бъде  достатъчна , за да 
осигурява  2 до 3 cm  2 на ларва . Съотношението  между  дебелината  на 
слоя  седимент  и тази на водата  над него  трябва  да бъде  1:4. Съдовете  
за изпитване  и другото  оборудване , което  ще влезе  в контакт  с 
изпитваната  система , следва  да бъде  изцяло  от стъкло  или от друг  
химически  инертен  материал  (напр . тефлон ). 
Избор  на видове  
12. Видът , който  трябва  да се използват  при изпитването , е за предп­  
очитане  Chironomus riparius . Chironomus tentans  също  е подходящ , но 
с него  се борави  по-трудно  и е необходим  по-дълъг  период  на 
изпитване . Chironomus yohimatsui  също  може  да бъде  подходящ . 
Подробности  за методите  на отглеждане  на Chironomus riparius  са 
дадени  в допълнение  2. Налична  е и информация  за условията  на 
отглеждане  на други  видове , т.е. Chironomus tentans  (4) и Chironomus 
yohimatsui  (11). Идентичността  на видовете  трябва  да се потвърждава  
преди  изпитването , но не е задължителна  преди  всеки  експеримент , ако 
организмите  са получени  при отглеждане  в изпитващата  лаборатория . 
Седимент  
13. За предпочитане  е да се използва  приготвен  седимент  (наричан  още 
възстановен , изкуствен  или синтетичен  седимент ). Ако обаче  се 
използва  естествен  седимент , трябва  да се определят  характеристиките  
му (най-малко  рН и съдържание  на органичен  въглерод , а определянето  
на други  параметри , напр ., на съотношението  C/N и зърнометричния  
състав , също  се препоръчва ), той следва  да бъде  незамърсен  и в него  да 
няма  други  организми , които  да се конкурират  с хирономидите , или да 
се хранят  с тях. Препоръчва  се също  така, преди  използването  му в 
изпитване  за токсичност  за хирономиди , естественият  седимент  да бъде  
аклиматизиран  в продължение  на седем  дни при същите  условия , при 
които  ще се провежда  изпитването . За използване  в описаното  тук 
изпитване  се препоръчва  следният  седимент  (1)(15)(16), приготвен  въз 
основа  на изкуствената  почва , използвана  в метод  за изпитване  В.8 
(14):  
а) 4—5 % торф  (сухо  тегло ); с рН възможно  най-близко  до обхвата  
5,5—6,0; важно  е да се използва  торф  под формата  на прах , ситно  
смлян  (размер  на частиците  < 1 mm) и изсушен  само  с въздух ; 
б) 20 % каолин  (сухо  тегло ) (за предпочитане  съдържанието  на 
каолинит  да е повече  от 30 %);  
в) 75—76 % кварцов  пясък  (сухо  тегло ) (трябва  да преобладава  финият  
пясък  с размер  на частиците  между  50 и 200 μm); 
г) добавя  се дейонизирана  вода , така че да влажността  на крайната  
смес  да бъде  в обхвата  30—50 %;  
д) добавя  се химически  чист  калциев  карбонат  (CaCO  3 ), за да се 
коригира  рН на крайната  смес  на седимента  до 7,0 ± 0,5;  
е) съдържанието  на органичен  въглерод  в крайната  смес  следва  да бъде  
2 % (± 0,5 %) и да бъде  коригирано , като се използват  подходящи  
количества  торф  и пясък , в съответствие  с а) и в). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1400
 
14. Източниците  на торф , каолин  и пясък  трябва  да са известни . 
Съставките  на седимента  следва  да се проверят  за липса  на 
химическо  замърсяване  (напр . тежки  метали , органични  хлорни  
съединения , органични  фосфорни  съединения  и т.н.). Пример  за приг­  
отвянето  на синтетичния  седимент  е даден  в допълнение  3. Допустимо  
е също  и смесването  на сухи  съставки , ако се докаже , че след  доба­  
вянето  на надседиментната  вода  не настъпва  разделяне  на съставките  
(напр . изплуване  на торфените  частици ), и че торфът  или седиментът  е 
подготвен  в необходимата  степен . 
Вода  
15. Всяка  вода , която  отговаря  на химичните  характеристики  за вода , 
приемлива  за използване  за разреждане , както  са изброени  в допълнение  
2 и 4, е подходяща  да се използва  като вода  за изпитването . Всяка  
подходяща  вода , природна  вода  (от повърхностни  или подпочвени  води ), 
реконституирана  вода  (вж. допълнение  2) или дехлорирана  чешмяна  вода  
може  да се използва  за отглеждане  и за изпитване , ако хирономидите  
оцеляват  в нея за времето  на отглеждане  и изпитване , без да показват  
признаци  на стрес . В началото  на изпитването  рН на водата  за изпитване  
трябва  да бъде  между  6 и 9, а общата  ѝ твърдост  — не по-висока  от 400 
mg/l, изразена  като CaCO  3 . Ако обаче  се предполага  взаимодействие  
между  отговорните  за твърдостта  йони  и изпитваното  вещество , следва  
да се използва  вода  с по-ниска  твърдост  (и затова  в този случай  не 
трябва  да се използва  среда  „Elendt M4“). По време  на цялото  изпитване  
трябва  да се използва  един  и същи  тип вода . Качествените  параметри  на 
водата , изброени  в допълнение  4, следва  да се измерват  поне  два пъти  
годишно  или всеки  път когато  има подозрение , че тези характеристики  
може  да са се променили  значително . 
Изходни  разтвори  — вода  с добавка  
16. Концентрациите , при които  се прави  изпитването , се изчисляват  въз 
основа  на концентрациите  в обема  на водата , т.е., водата  над 
седимента . Разтворите  с избраните  концентрации , които  ще се 
ползват  в изпитването , обикновено  се приготвят  чрез разреждане  на 
изходния  разтвор . Изходните  разтвори  се приготвят  за предпочитане  
чрез разтваряне  на изпитваното  вещество  в изпитвателната  среда . В 
някои  случаи  може  да се наложи  да се използват  разтворители  или 
диспергиращи  агенти , с цел да се получи  изходен  разтвор  с 
подходяща  концентрация . Като  подходящи  разтворители  могат  да се 
посочат : ацетон , етанол , метанол , моноетилов  етер на етиленгликола , 
диметилов  етер на етиленгликола , диметилформамид  и триетиле­  
нгликол . Като  диспергиращи  агенти  могат  да се използват  Cremophor 
RH40, Tween 80, метилцелулоза  0,01 % и НСО -40. Когато  се използва  
подпомагащ  разтварянето  агент , неговата  концентрация  не трябва  да е 
по-голяма  от 0,1 ml/l и трябва  да бъде  една  и съща  във всички  съдове . 
Когато  се използва  подпомагащ  разтварянето  агент , той не трябва  да 
оказва  значително  въздействие  върху  преживяването , нито  видимо  
неблагоприятно  въздействие  върху  ларвите  на хирономидите , като 
това трябва  да е показано  с помощта  на контролен  експеримент  само  
с разтворител . Въпреки  това, следва  да се положат  всички  усилия , за да 
се избегне  употребата  на такива  материали . 
ПЛАНИРАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
17. Планирането  на изпитването  се изразява  в избор  на броя  на стой­  
ностите  на концентрацията  на изпитване  и интервалите  между  тези 
стойности , броя  на съдовете  за всяка  концентрация  и броя  на ларвите  
във всеки  съд. Описани  са планове  на изпитване  за определяне  на 
концентрацията  на въздействие  ЕС, за определяне  на NOEC и за 
провеждане  на гранично  изпитване . Регресионният  анализ  е за предп­  
очитане  пред  подхода , основан  на проверка  на хипотези . 
Планиране  на регресионния  анализ  
18. Концентрацията , при която  се проявява  въздействие  (напр . ЕС 15 , EC  50 ) 
и интервалът  концентрации , над които  въздействието  на изпитваното  
вещество  е от значение , следва  да бъдат  обхванати  от концентрациите , 
включени  в изпитването . По принцип  точността , и по-специално  валид­  
ността , с която  може  да се направи  оценка  на стойностите  на конце­  
нтрацията  на въздействие  (EC  x ), се повишава , когато  концентрацията  
на въздействие  е в обхвата  на изпитваните  стойности  на конце­  
нтрацията . Следва  да се избягват  екстраполации  за стойности , много  
по-ниски  от най-ниската  концентрация  на въздействие  или по-високи  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1401
 
от най-високата  концентрация . За избора  на интервал  от концентрации , 
които  да се изпитат , е полезно  да се извърши  предварително  изпитване  
за определяне  на обхвата  (вж. точка  27).  
19. Ако трябва  да се направи  оценка  на EC  x , следва  да се направи  
изпитване  при най-малко  пет концентрации  и три повторения  за 
всяка  концентрация . Във всички  случаи , препоръчва  се да се 
използват  достатъчно  стойности  на концентрациите  на изпитване , за 
да е възможна  удовлетворителна  оценка  чрез модела . Коефициентът , 
с чиято  помощ  се получава  следващата  концентрация , не бива  да бъде  
по-голям  от две (може  да се направи  изключение  в случаите , в които  
графиката  на зависимостта  на реакцията  от дозата  има твърде  слаб  
наклон ). Броят  на повторенията  за всяко  третиране  може  да се 
намали , ако броят  на изпитваните  концентрации , които  предизвикват  
различна  реакция , се увеличи . Увеличаването  на броя  на повторенията  
или съкращаването  на интервала  между  концентрациите  обикновено  
води  до стесняване  на доверителния  интервал  на изпитването . Ако 
трябва  да се направи  оценка  на преживяването  и растежа  на ларвите , 
необходими  са допълнителни  повторения . 
Планиране  на изпитване  за оценка  на NOEC/LOEC  
20. Ако трябва  да се оценят  NOEC/LOEC, следва  да се направи  изпитване  
при пет концентрации  и с най-малко  четири  повторения , а коеф­  
ициентът  между  стойностите  на концентрациите  не бива  да е по- 
голям  от две. Броят  на отделните  повторения  следва  да е достатъчен  
за осигуряване  на достатъчно  статистическа  мощност  за откриване  на 
разлика  от 20 % по отношение  на контролата  при равнище  на 
значимост  от 5 % (p = 0,05). По отношение  на скоростта  на развитие , 
обикновено  е подходящо  да се предприеме  дисперсионен  
анализ  (ANOVA), напр ., тест на Dunnett и тест на Willams 
(17)(18)(19)(20). По отношение  на коефициента  на имагиниране  може  
да се използва  тестът  на Cochran-Armitage, точният  тест на Fisher ( с 
корекция  на Bonferroni), или тестът  на Mantel-Haenszel.  
Гранично  изпитване  
21. Може  да се предприеме  гранично  изпитване  (с една  концентрация  за 
изпитване  и една  контрола ), ако не е наблюдавано  въздействие  в предварит­  
елното  изпитване  за определяне  на обхвата . Предназначението  на 
граничното  изпитване  е да се покаже , че стойността , при която  изпитваното  
вещество  има токсично  въздействие , е по-висока  от изпитаната  гранична  
стойност  на концентрацията . Не е възможно  да се препоръча  някаква  
определена  стойност  на концентрацията  в рамките  на настоящия  метод  за 
изпитване , това се оставя  на преценката  на регулаторния  орган . Обик­  
новено  са необходими  най-малко  шест  повторения  както  на третираните  
проби , така и на контролата . Следва  да се докаже  достатъчно  статистическа  
мощност  за откриване  на разлика  от 20 % по отношение  на контролата  при 
равнище  на значимост  от 5 % (p = 0,05). По отношение  на метричния  
отговор  (скорост  на развитие  и тегло ), t-тестът  е подходящ  статистически  
метод , ако данните  отговарят  на изискванията  на изпитването  (нормалност , 
хомогенни  дисперсии ). Може  да се използва  и t-тест с нееднаква  дисперсия  
или непараметричен  тест, напр . тест на Wilcoxon-Mann-Whithey, ако изис­  
кванията  не са изпълнени . По отношение  на коефициента  на имагиниране , 
точният  тест на Fisher е подходящ . 
ПРОЦЕДУРА  
Условия  на експозиция  
Приготвяне  на системата  вода  с добавка  — седимент  
22. Подходящи  количества  приготвен  седимент  (вж. точки  13—14 и 
допълнение  3) се слагат  в съдовете  за изпитване , така че да се 
образува  слой  от около  1,5 cm. Добавя  се вода  до 6 cm (вж. точка  
15). Съотношението  между  дебелината  на слоя  седимент  и тази на 
водата  трябва  да не надвишава  1:4, а слоят  седимент  не трябва  да 
бъде  по-дебел  от 3 cm. Системата  седимент  — вода  трябва  да се 
остави , при леко  аериране , седем  дни, преди  да бъдат  добавени  
опитните  организми  (вж. точка  14 и допълнение  3). За да се избегне  
разделяне  на съставките  на седимента  и повторно  суспендиране  във 
водата  на фините  частици  при добавянето  на водата  за изпитването , 
седиментът  може  да се покрие  със пластмасов  диск , докато  се налива  
водата , веднага  след  което  дискът  да се извади . Могат  да бъдат  
подходящи  и други  устройства . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1402
 
23. Съдовете  за изпитването  следва  да бъдат  покрити  (напр . със стъклени  
пластинки ). Ако е необходимо , по време  на изследването  съдовете  се 
допълват  до първоначалния  обем , за да се компенсира  изпаряването  на 
водата . Това  следва  да се извърши , като се използва  дестилирана  или 
дейонизирана  вода , за да се избегне  образуването  на соли . 
Добавяне  на опитните  организми  
24. Четири  до пет дни преди  добавянето  на опитните  организми  в съдовете  
за изпитване , агломератите  от яйца  следва  да се извадят  от културите  и 
да се сложат  в малки  съдове  в среда  за отглеждане . Може  да се 
използва  зряла  среда  от онази , в която  е отглеждана  изходната  
култура , или прясно  приготвена  среда . Ако се използва  такава , към 
нея се добавя  малко  количество  храна , т.е., зелени  водорасли  и/или 
няколко  капки  филтрат  от суспензия  от фино  смляна  храна  за риби  
(вж. допълнение  2). Следва  да се използват  само  прясно  снесени  
агломерати  от яйца . Като  правило , ларвите  започват  да се излюпват  
няколко  дни след  снасянето  на яйцата  (2 до 3 за Chironomus riparius  
при 20 °С, 1 до 4 за Chironomus tentans  при 23 °С и Chironomus 
yohimatsui  при 25 °С, а растежът  на ларвите  преминава  през четири  
стадия , всеки  от които  трае от 4 до 8 дни. В изпитването  се следва  да 
се използват  ларви  в първи  стадий  на развитие  (2—3 или 1—4 дни след  
излюпване ). Стадият  на развитие  на насекомите  може  да се провери  
чрез проверка  на широчината  на капсулата  на главата  (6). 
25. Двадесет  ларви  в първи  ларвен  стадий  се разпределят  на случаен  
принцип  във всеки  съд за изпитване , който  съдържа  седимент  с 
добавка  и вода , като се използва  пипета  с тъп край . Аерирането  на 
водата  трябва  да се спре , когато  ларвите  се добавят  в съдовете  за 
изпитване , и да не се подновява  преди  изтичането  на 24 часа след  
добавянето  (вж. точки  24 и 32). В зависимост  от използвания  
протокол  за изпитване  (вж. точки  19 и 20), броят  на ларвите , 
използвани  за всяка  концентрация  е най-малко  60 за оценка  на стой­  
ността  на EC и 80 за определяне  на NOEC.  
26. Двадесет  и четири  часа след  добавянето  на ларвите , изпитваното  
вещество  се добавя  във водата  над седимента  и отново  се прилага  
леко  аериране . Малки  обеми  от разтворите  на изпитваното  вещество  
се въвеждат  под повърхността  на водата , като се използва  пипета . След  
това водата  над седимента  се разбърква  леко , като се внимава  
седиментът  да остане  незасегнат . 
Концентрации  на изпитване  
27. За определяне  на интервала  от концентрации  за окончателното  
изпитване  може  да бъде  от полза  извършването  на изпитване  за 
определяне  на обхвата . За тази цел се използва  серия  от много  
раздалечени  концентрации  на изпитваното  вещество . За да се осигури  
гъстота  на хирономиди  на повърхността , еднаква  с използваната  в 
същинското  изпитване , хирономидите  се експонират  на всяка  една  
концентрация  на изпитваното  вещество  за период , който  позволява  
оценка  на подходящите  концентрации  за изпитването , като не са необ­  
ходими  повторения . 
28. Концентрациите  за същинското  изпитване  се определят  въз основа  на 
резултата  на изпитването  за определяне  на обхвата . Следва  да се 
използват  най-малко  пет концентрации , които  се избират , както  е 
описано  в точки  18—20.  
Контролни  съдове  
29. В изпитването  трябва  да се включи  и съответният  брой  контролни  
съдове  без изпитвано  вещество , но със седимент  (вж. точки  19—20), 
като се предвиди  съответният  брой  повторения . Ако за прилагането  на 
изпитваното  вещество  е използван  разтворител  (вж. точка  16), следва  
да се добави  и контролен  съд със седимент  с разтворител . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1403
 
Системи  за изпитване  
30. Използват  се статични  системи . Могат  да се използват  и полустатични  
системи  или такива  с периодично  или непрекъснато  обновяване  на 
водата  над седимента  в изключителни  случаи , например , когато  спец­  
ификациите  на качеството  на водата  станат  неподходящи  за организма , 
с който  се провежда  изпитването , или когато  се нарушава  химическото  
равновесие  (напр . нивото  на разтворения  кислород  е твърде  ниско , 
концентрацията  на продукти  от екскреция  е прекалено  висока , или от 
седимента  се просмукват  минерали  и влияят  на стойността  на рН и/или 
твърдостта  на водата ). Въпреки  това, други  методи  за подобряване  на 
качеството  на водата  над седимента , като напр . аериране , обикновено  
са достатъчни  и са за предпочитане . 
Храни  
31. Необходимо  е да се хранят  ларвите , за предпочитане  всеки  ден или 
най-малко  три пъти  седмично . Храна  за риби  (суспензия  във вода  или 
фино  смляна  храна , напр . Tetra-Min или Tetra-Phyll; вж. подробности  в 
допълнение  2) в количество  по 0,25—0,5 mg (0,35—0,5 mg за C. yoshi­
matui ) на ларва  на ден изглежда  подходяща  за млади  ларви  в първите  
10 дни. За по-възрастни  ларви  е необходима  малко  повече  храна . 
0,5—1 mg за ларва  дневно  трябва  да е достатъчно  за оставащото  
време  на изпитването . Дажбата  храна  на всички  опитни  и контролни  
организми  следва  да се намали , ако е забелязано  развитие  на гъбички , 
или ако сред  контролните  организми  има смъртност . Ако е невъзможно  
да се спре  развитието  на гъбички , изпитването  трябва  да се повтори . 
когато  се изпитват  силно  адсорбиращи  вещества  (напр . с log K  ow > 5) 
или вещества , които  се свързват  ковалентно  със седимента , колич­  
еството  храна , необходима  за гарантиране  на оцеляването  и 
нормалното  развитите  на организмите  може  да се добави  към приг­  
отвения  седимент  преди  периода  на стабилизация . За тази цел вместо  
храна  за риби  трябва  да се използва  растителна  материя , например  да 
се добавят  0,5 % (сухо  тегло ) фино  смлени  листа  от коприва  (Urtica 
dioica ), черница  (Morus alba ), бяла  детелина  (Trifolium repens ), спанак  
(Spinacia oleracea ) или друг  растителен  материал  (Cerophyl  или алфа - 
целулоза ). 
Условия  за инкубиране  
32. Водата  над седимента  в съдовете  за изпитване  леко  се аерира , за предп­  
очитане  24 часа след  добавянето  на ларвите , като аерирането  
продължава  през цялото  време  на изпитването  (следва  да се вземат  
мерки  концентрацията  на разтворения  кислород  да не пада  под 60 % 
от стойността  на насищане  във въздух ). Аерирането  се осъществява  с 
помощта  на стъклена  пипета  „Пастьор “, закрепена  на 2—3 cm над слоя  
седимент  (едно  или няколко  мехурчета  в секунда ). Когато  се изпитват  
летливи  химикали , следва  се внимава  да не се аерира  системата  
седимент -вода . 
33. Изпитването  се провежда  при постоянна  температура  20 °С (± 2 °С). 
Препоръчваните  за C. tentans  и C. yoshimatui  температури  са съответно  
23 °C и 25 °C (± 2 °C). Продължителността  на излагане  на светлина  е 
16 часа, а интензитетът  на светлината  трябва  да бъде  между  500 и 1 000 
lux. 
Продължителност  на експозицията  
34. Експозицията  започва  с поставянето  на ларвите  в съдовете  с 
изпитваното  вещество  и в контролните  съдове . Максималната  продъ­  
лжителност  на експозицията  е 28 дни за C. riparius  и C. yoshimatsui  и 
65 за C. tentans.  Ако насекомите  имагинират  по-рано , изпитването  
може  да се прекрати  след  най-малко  пет дни след  имагинирането  на 
последното  възрастно  насекомо  в контролните  съдове . 
НАБЛЮДЕНИЯ  
Имагиниране  
35. Определя  се времето  на развитие  и общият  брой  на напълно  
имагинирали  мъжки  и женски  насекоми . Мъжките  лесно  се разпознават  
по перестите  си антени . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1404
 
36. Съдовете  за изпитване  се наблюдават  най-малко  три пъти  седмично , за 
да се оцени  визуално  дали  не е налично  ненормално  по отношение  на 
контролите  поведение  (напр . напускане  на седимента , необичайно  
плуване ). През  периода , когато  се очаква  имагинирането  на насек­  
омите , е необходимо  ежедневно  броене  на имагиниралите  индивиди . 
Полът  и броят  на напълно  имагиниралите  насекоми  се записва  всеки  
ден. След  разпознаване , насекомите  се изваждат  от съдовете . Всички  
яйца , снесени  преди  завършването  на изпитването , се записват  и 
изваждат , за да се предотврати  повторно  въвеждане  на ларви  в 
седимента . Броят  на видимите  пашкули , които  не са имагинирали , 
също  се записва . В допълнение  5 са дадени  насоки  за измерването  на 
имагинирането . 
Растеж  и преживяване  
37. Ако трябва  да се получат  данни  за преживяването  и растежа  на ларвите  
след  10-ия ден, в началото  на изпитването  в него  се включват  допълн­  
ителни  съдове  за изпитване , така че да могат  да бъдат  използвани  по- 
късно . Седиментът  от допълнителните  съдове  се пресява  през сито  с 
размер  на отворите  250 μm, за да се задържат  ларвите . Критериите  за 
смърт  са неподвижност  или липса  на реакция  спрямо  механичен  
стимул . Липсващите  ларви  също  се смятат  за мъртви  (ларвите , които  
са умрели  в началото  на изпитването  може  да са били  разградени  от 
микроби ). Определя  се сухото  тегло  (без пепел ) на оцелелите  ларви  за 
опитен  съд и се изчислява  средното  индивидуално  сухо  тегло  за съд. 
Полезно  е да се определи  на кой стадий  на развитие  се намират  
ларвите ; за целта  може  да се използва  широчината  на капсулата  на 
главата  на всеки  индивид . 
Аналитични  измервания  
Концентрация  на изпитваното  вещество  
38. Като  минимум  следва  да се анализират  проби  от водата  над седимента , 
водата  от порите  и от седимента  в началото  (за предпочитане  един  час 
след  прилагането  на изпитваното  вещество ) и в края  на изпитването  
при най-високата  концентрация  и при по-ниска  такава . Посоченото  
определяне  на концентрацията  на изпитваното  вещество  дава 
информация  за трансформациите /разпределението  му в системата  
вода -седимент . Вземането  на проби  от седимента  в началото  на 
изпитването  може  да окаже  влияние  върху  изпитваната  система  
(напр . посредством  изваждането  на ларви , предназначени  за изпитва­  
нето ), поради  което  в началото  на изпитването  и по време  на самото  
изпитване  (вж. точка  39) за извършване  на аналитично  определяне  
трябва  да се използват  допълнителни  съдове . Анализирането  на 
седимента  може  да не се окаже  необходимо , ако разпределението  на 
изпитваното  вещество  между  водата  и седимента  е еднозначно  
определено  с изследване  на водата /седимента  при сходни  условия  
(напр . съотношение  на седимента  към водата , вид на прилагането , 
съдържание  на органичен  въглерод  на седимента ). 
39. Когато  се правят  междинни  измервания  (напр . на 7-ия ден) и ако 
анализът  изисква  големи  проби , които  не могат  да се вземат  от 
лабораторните  съдове , без да се повлияе  върху  системата  за изпитване , 
аналитичните  определяния  следва  да се извършват  върху  проби  от 
допълнителните  съдове  за изпитване , които  са третирани  по същия  
начин  (включително  присъствието  на организми  за изпитването ), но 
които  не се използват  за биологични  наблюдения . 
40. За изолиране  на интерстициалната  вода  се препоръчва  центрофугиране  
при 10 000 g и 4 °C в продължение  на 30 min. Ако обаче  изпитваното  
вещество  не се адсорбира  от филтрите , филтруването  също  е 
приемливо . В някои  случаи  не е възможно  да се анализират  конце­  
нтрациите  във водата  от порите , тъй като пробата  е с много  малък  
размер . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1405
 
Физични  и химични  характеристики  
41. рН, концентрацията  на разтворения  кислород  във водата  за изпитване  и 
температурата  на съдовете  за изпитване  следва  да се измерват  по 
подходящ  начин  (вж. точка  10). Твърдостта  и амонякът  се измерват  в 
контролните  съдове  и в един  съд за изпитване  при най-високата  конце­  
нтрация  в началото  и в края  на изпитването . 
ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Обработка  на резултатите  
42. Целта  на настоящото  изпитване  е да се определи  въздействието  на 
изпитваното  вещество  върху  скоростта  на развитие  и общия  брой  на 
достигналите  до стадий  на имаго  мъжки  и женски  хирономиди , а при 
10-дневното  изпитване  – въздействието  върху  преживяването  и теглото  
на ларвите . Ако няма  указания , че съществуват  статистически  значими  
различия  между  половете  по отношение  на чувствителността  към 
изпитваното  вещество , резултатите  за мъжките  и женските  индивиди  
могат  да се обединят  за целите  на статистическия  анализ . Разликите  в 
чувствителността  между  половете  могат  да се оценят  статистически  с 
помощта  напр . на табличния  критерий  χ 2 -r × 2. Преживяването  на 
ларвите  и средното  индивидуално  сухо  тегло  за всеки  съд може  да се 
определи  след  10 дни, когато  това се изисква . 
43. Концентрациите , оказващи  въздействие , изразени  като концентрации  
във водата  над седимента , се изчисляват  за предпочитане  въз основа  
на измерените  концентрации  в началото  на изпитването  (вж. точка  38).  
44. За да се изчисли  конкретна  прогнозна  стойност  на EC  50 или всяка  
друга  стойност  EC  х , статистическите  данни  за всеки  съд може  да се 
използват  като истински  повторения . При изчисляването  на 
доверителния  интервал  за всяка  стойност  на ЕС х , трябва  да се вземе  
предвид  варирането  между  съдовете , или трябва  да се покаже , че то е 
толкова  малко , че може  да се пренебрегне . Когато  моделът  е коригиран  
с помощта  на метода  на най-малките  квадрати , трябва  да се приложи  
трансформация  към статистическите  данни  за съд, за да се подобри  
хомогенността  на дисперсията . Стойностите  обаче  на ЕС х следва  да 
се изчисляват  след  като резултатите  се преобразуват  обратно  в 
изходни  стойности . 
45. Когато  със статистическия  анализ  се цели  определяне  на NOEC/LOEC 
чрез проверка  на хипотези , дисперсията  между  съдовете  трябва  да се 
взема  под внимание , напр . с помощта  на „вложена “ ANOVA. Напротив , 
при ситуации , в които  са налице  нарушения  на обичайните  допускания  
на ANOVA, може  да се окажат  полезни  по-мощни  критерии  (21).  
Съотношение  на имагиниране  
46. Стойностите  на съотношението  на имагиниране  (СИ) са данни  с две 
възможни  алтернативни  значения  и могат  да се анализират  с теста  на 
Cochran-Armitage, който  се прилага  регресивно , когато  се очаква  
монотонна  зависимост  между  дозата  и отговора , а тези данни  
потвърждават  очакванията . В противен  случай  може  да се използва  
точният  тест на Fisher или тестът  на Mantel-Haenszel с коригирани  по 
Bonferroni-Holm р-стойности . Ако между  повторения  при една  и съща  
концентрация  са налице  данни  за по-голямо  вариране , отколкото  би 
показало  биномно  разпределение  (често  наричано  „екстра  биномна “ 
вариация ), се прилага  устойчив  тест на Cochran-Armitage или точен  
тест на Fisher, както  се предлага  в (21).  
47. Сборът  от достигналите  до стадий  на имаго  насекоми  на съд, ne се 
определя  и се разделя  на броя  на въведените  ларви  n а : 
ER ¼ n e 
n a ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1406
 
където : 
ER = съотношение  на имагиниране  
n e = брой  на достигналите  до стадий  на имаго  насекоми  на съд 
n a = брой  на въведените  ларви  на съд 
48. Алтернативното  решение , което  е най-пригодно  за големи  извадки , 
когато  е налице  екстра  биномна  дисперсия , е да се третира  съотнош­  
ението  на имагиниране  като непрекъснат  отговор  и да се използват  
процедури  като тест на William, когато  се очаква  монотонна  
зависимост  между  дозата  и отговора  и тя съответства  на тези данни  
за съотношението  на имагиниране . Когато  е нарушена  монотонността , 
подходящ  е тестът  на Dunnett. Като  голяма  извадка  тук се определя  
такава , при която  броят  както  на имагиниралите , така и на неим­  
агиниралите  хирономиди  надвишава  пет за всяко  повторение  (съд). 
49. За да се приложат  методите  на ANOVA, стойностите  на СИ трябва  
първо  да се преобразуват  с трансформация  арксинус –корен  квадратен  
или трансформация  на Freeman-Tukey, за да се получи  приблизително  
нормална  дистрибуция  и да се изравнят  дисперсиите . По отношение  на 
коефициента  на имагиниране  може  да се използва  тестът  на 
Cochran-Armitage, точният  тест на Fisher ( с корекция  на Bonferroni), 
или тестът  на Mantel-Haenszel при използване  на абсолютни  честоти . 
Трансформацията  арксинус –корен  квадратен  се прилага , като се вземе  
реципрочната  стойност  на синус  (sin  –1 ) от квадратния  корен  на СИ. 
50. Стойностите  EC  x за съотношението  на имагиниране  се изчисляват  с 
помощта  на регресионен  анализ  (или напр . probit (22), logit, Weibull, 
подходящо  достъпно  срещу  заплащане  програмно  осигуряване , и т.н.). 
Ако регресионният  анализ  е неуспешен  (т.е., ако има по-малко  от два 
частични  отговора ), използват  се други  непараметрични  методи , напр . 
плаващо  средно  или проста  интерполация  
Скорост  на развитие  
51. Средното  време  на развитие  е средният  период  между  въвеждането  на 
ларвите  (ден 0 на изпитването ) и имагинирането  на експерименталната  
кохорта  от насекоми . (За изчисляването  на действителното  време  за 
развитие  следва  да се вземе  предвид  възрастта  на ларвите  в момента  
на въвеждане ). Скоростта  на развитие  е реципрочна  на времето  на 
развитие  (единица : 1/ден) и отговаря  на частта  от развитието  на 
ларвите , която  се извършва  за един  ден. Скоростта  на развитие  се 
предпочита  в оценката  на изследванията  на токсичността  на седимента , 
тъй като нейната  дисперсия  е по-ниска , и тя е по-хомогенна  и по- 
близка  до нормалното  разпределение , отколкото  средното  време  на 
развитие . Поради  това могат  да се използват  мощни  параметрични  
тестови  процедури , в които  се използва  скоростта  на развитие , а не 
времето  за развитие . По отношение  на скоростта  на развитие  като 
непрекъснат  отговор , стойностите  на EC  x могат  да се оценят  с 
използване  на регресионен  анализ  (напр . (23), (24).  
52. В посочените  по-долу  статистически  тестове  се приема , че насекомите , 
наблюдавани  в деня  за инспекция  х, са достигнали  до стадия  на имаго  
в средата  на интервала  между  ден х и ден х–1 (l = дължина  на периода  
на инспекция , обикновено  един  ден). средната  скорост  на развитие  за 
съд (x) се изчислява  по: 
x ¼ X  m 
i¼1 ƒ i x i 
n e 
където : 
x: средна  скорост  на развитие  за съд 
i: индекс  на периода  на инспекция  
m: максимален  брой  периоди  на инспекция  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1407
 
ƒ i : брой  на насекомите , достигнали  до стадий  на имаго  през периода  
на инспекция  i 
n e : общ брой  на насекомите , достигнали  до стадий  на имаго  в края  на 
експеримента  (= P ƒ i ) 
x i : скорост  на развитие  на насекомите , достигнали  до стадий  на 
имаго  през интервала  на инспекция  i 
x i ¼ 1= Í 
day  i Ä l i 
2 Î 
където : 
day  i : ден на инспекция  (дни след  прилагането ) 
l i : продължителност  на интервала  на инспекция  (дни, обикновено  1 
ден) 
Доклад  от изпитването  
53. В доклада  от изпитването  трябва  да се съобщава  най-малко  следната  
информация : 
Изпитвано  вещество : 
— физична  природа  и, където  е подходящо , физични  и химични  
свойства  (разтворимост  във вода , парно  налягане , коефициент  на 
разпределение  в почва  (или в седимент , ако такава  информация  е 
налице ), стабилност  във вода , и т.н.), 
— данни  за идентичността  на химикала  (общоприето  наименование , 
химично  наименование , номер  по CAS, и т.н.), включително  
чистота  и метод  за анализ  за количествено  определяне  на 
изпитваното  вещество . 
Животински  вид за изпитването : 
— използвани  в изпитването  животни : вид, научно  наименование , 
източник  на организмите  и условия  на отглеждане , 
— информация  за боравенето  с агломератите  от яйца  и ларвите , 
— възраст  на използваните  животни  при въвеждането  им в съдовете  за 
изпитване . 
Условия  на изпитването : 
— използван  седимент , т.е., естествен  или приготвен  седимент , 
— за естествения  седимент  — местоположение  и описание  на мястото  
на вземане  на пробата , включително , ако е възможно , информация  
за замърсяването  в миналото ; характеристики : рН, съдържание  на 
органичен  въглерод , съотношение  C/N и зърнометричен  състав  (ако 
е подходящо ), 
— подготовка  на синтетичния  седимент : съставки  и характеристики  
(съдържание  на органичен  въглерод , рН, влажност , и т.н. в 
началото  на изпитването ), 
— подготовка  на водата  за изпитването  (ако се използва  възстановена  
вода ) и характеристики  на водата  (концентрация  на кислород , рН, 
проводимост , твърдост , и т.н. в началото  на изследването ), 
— дълбочина  на седимента  и на водата  над седимента , 
— обем  на водата  над седимента  и на водата  в порите ; тегло  на 
влажния  седимент  съответно  със и без водата  в порите , 
— съдове  за изпитване  (материал  и размери ), 
— метод  за приготвяне  на изходни  разтвори  и на концентрациите  за 
изпитване , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1408
 
— прилагане  на изпитваното  вещество : използвани  концентрации , 
брой  на повторенията  и употреба  на разтворител , ако има такава  
употреба , 
— инкубационни  условия : температура , редуване  на светлина  и 
тъмнина , светлинен  интензитет , аериране  (периодичност  и интенз­  
итет), 
— подробна  информация  за храненето , включително  вида  на храната , 
приготвянето  и режима  на хранене . 
Резултати : 
— номинални  концентрации  на изпитване , измерени  концентрации  на 
изпитване , резултати  от всички  анализи  за определяне  на конце­  
нтрацията  на изпитваното  вещество  в съдовете  за изпитване , 
— качество  на водата  в съдовете  за изпитване , т.е., рН, температура , 
разтворен  кислород , твърдост  и амоняк , 
— замяна  на изпарилата  се вода  от изпитването , ако има такава , 
— брой  на достигналите  до стадий  на имаго  мъжки  и женски  насекоми  
за съд и за ден, 
— брой  ларви , недостигнали  до стадий  на имаго  за съд, 
— средно  индивидуално  сухо  тегло  на ларвите  за съд, и ако е 
подходящо , за стадий , 
— процент  на достигане  до стадий  на имаго  и концентрация  на 
повторение  (общо  за мъжките  и женските  насекоми ), 
— средна  скорост  на развитие  на достигналите  до стадий  на имаго  
насекоми  за повторение  и за концентрация  (общо  за мъжките  и за 
женските  насекоми ), 
— предварителни  оценки  на стойностите  на крайни  точки  за токсич­  
ността , напр . EC  x (с свързаните  с тях доверителни  интервали ), 
LOEC и/или NOEC, както  и статистическите  методи , използвани  
за тяхното  определяне , 
— обсъждане  на резултатите , включително  всякакво  влияние  върху  
резултата  от изпитването , вследствие  на отклонения  от настоящия  
метод  за изпитване . 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) BBA (1995). Long-term toxicity test with  Chironomus riparius : Deve­
lopment and validation of a new test system. Edited by M. Streloke and 
H. Köpp. Berlin 1995.  
(2) Fleming R  et al.  (1994). Sediment Toxicity Tests for Poorly Water-Soluble 
Substances. Final Report to them European Commission. Report No: EC 3738. August 1994. WRc, UK.
 
(3) SETAC (1993). Guidance Document on Sediment toxicity Tests and 
Bioassays for Freshwater and Marine Environments. From the WOSTA Workshop held in the Netherlands.
 
(4) ASTM International/E1706-00 (2002). Test Method for Measuring the 
Toxicity of Sediment-Associated Contaminants with Freshwater Inverteb ­
rates. pp 1125-1241. In ASTM International 2002 Annual Book of Stan ­
dards. Volume 11.05. Biological Effects and Environmental Fate; Biotech ­
nology; Pesticides. ASTM International, West Conshohocken, PA.  
(5) Environment Canada (1997). Test for Growth and Survival in Sediment 
using Larvae of Freshwater Midges ( Chironomus tentans  or Chironomus 
riparius ). Biological Test Method. Report SPE 1/RM/32. December 1997.  
(6) US-EPA (2000). Methods for Measuring the Toxicity and Bioaccumulation 
of Sediment-associated Contaminants with Freshwater Invertebrates. 
Second edition. EPA 600/R-99/064. March 2000. Revision to the first 
edition dated June 1994.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1409
 
(7) US-EPA/OPPTS 850.1735. (1996): Whole Sediment Acute Toxicity Inver ­
tebrates.  
(8) US-EPA/OPPTS 850.1790. (1996): Chironomid Sediment toxicity Test.  
(9) Milani D, Day KE, McLeay DJ, Kirby RS (1996). Recent intra- and 
inter-laboratory studies related to the development and standardisation of Environment Canada’s biological test methods for measuring sediment toxicity using freshwater amphipods  (Hyalella azteca)  and midge larvae  
(Chironomus riparius).  Technical Report. Environment Canada. National 
Water Research Institute. Burlington, Ontario, Canada.
 
(10) Sugaya Y (1997). Intra-specific variations of the susceptibility of insec ­
ticides  in Chironomus yoshimatsui . Jp. J. Sanit. Zool. 48 (4): 345-350.  
(11) Kawai K (1986). Fundamental studies on Chironomid allergy. I. Culture 
methods of some Japanese Chironomids (Chironomidae, Diptera). Jp. J. 
Sanit. Zool. 37(1): 47-57.  
(12) OECD (2000). Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of 
Difficult Substances and Mixtures. OECD Environment, Health and 
Safety Publications, Series on Testing and Assessment № 23. 
(13) Environment Canada (1995). Guidance Document on Measurement of 
Toxicity Test Precision Using Control Sediments Spiked with a Reference Toxicant. Report EPS 1/RM/30. September 1995.
 
(14) Глава  В.8 от настоящото  приложение , Токсичност  за земни  червеи  
(15) Suedel BC and Rodgers JH (1994). Development of formulated reference 
sediments for freshwater and estuarine sediment testing. Environ. Toxicol. 
Chem. 13: 1163-1175.  
(16) Naylor C and Rodrigues C (1995). Development of a test method for 
Chironomus riparius using a formulated sediment. Chemosphere 31: 3291-3303.
 
(17) Dunnett CW (1964). A multiple comparisons procedure for comparing 
several treatments with a control. J. Amer. Statis. Assoc. 50: 1096-1121.  
(18) Dunnett CW (1964). New tables for multiple comparisons with a control. 
Biometrics 20: 482-491.  
(19) Williams DA (1971). A test for differences between treatment means when 
several dose levels are compared with a zero dose control. Biometrics 27: 
103-117.  
(20) Williams DA (1972). The comparison of several dose levels with a zero 
dose control. Biometrics 28: 510-531.  
(21) Rao JNK and Scott AJ (1992). A simple method for the analysis of 
clustered binary data. Biometrics 48:577-585.  
(22) Christensen ER (1984). Dose-response functions in aquatic toxicity testing 
and the Weibull model. Water Research 18: 213-221.  
(23) Bruce and Versteeg (1992). A statistical procedure for modelling 
continuous toxicity data. Environmental Toxicology and Chemistry 11:1485-1494.
 
(24) Slob W (2002). Dose-response modelling of continuous endpoints. Toxicol. 
Sci. 66: 298-312.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1410
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
За целите  на настоящия  метод  са използвани  следните  определения : 
Приготвен  седимент  или възстановен , изкуствен  или синтетичен  седимент  
е смес  от материали , използвани  за симулиране  на физичните  съставки  на 
естествения  седимент . 
Вода  над седимента  е водата , която  се намира  над седимента  в съда  за 
изпитване . 
Интерстициална , или вода  от порите  е водата , която  заема  пространството  
между  частиците  на почвата  и седимента . 
Вода  с добавка  е вода , към която  е добавено  изпитваното  вещество . 
Изпитван  химикал : Всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1411
 
Допълнение  2 
Препоръки  за отглеждане  на Chironomus riparius  
1. Ларвите  на Chironomus  може  да се отглеждат  в кристални  панички  или 
в по-големи  контейнери . На дъното  на контейнера  се разпръсква  фин 
кварцов  пясък  на тънък  слой  с дебелина  5 до 10 mm. Беше  посочено , 
че кизелгурът  (напр . Merck, арт. 8117) също  е подходящ  субстрат  (по- 
тънък  слой  от само  няколко  mm е достатъчен ). След  това се добавя  
подходяща  вода  до достигане  на дълбочина  от няколко  сm. Долива  се 
вода , ако е необходимо , за да се компенсира  загубата  от изпаряване  и 
за да се предотврати  изсушаването . Водата  може  да се сменя , ако е 
необходимо . Следва  да се осигури  умерено  проветряване .. Съдовете  за 
отглеждане  на ларвите  следва  да се поставят  в подходяща  клетка , с 
която  да се предотврати  отлитането  на отгледаните  възрастни  
насекоми . Клетката  следва  да бъде  с достатъчни  размери , за да се 
даде  възможност  за оформяне  на рой от получените  възрастни , 
защото  в противен  случай  може  да не се стигне  до копулация  (най- 
малко  30 × 30 × 30 сm.). 
2. Клетките  следва  да се държат  при стайна  температура  или в помещение  
е постоянни  характеристики  на средата  при 20 ± 2 ° С със светъл  
период  от 16 часа (интензитет  около  1 000 lux) и 8 часа тъмнина . 
Докладвано  е, че относителна  влажност , по-ниска  от 60 %, може  да 
възпрепятства  размножаването . 
Вода  за разреждане  
3. може  да се използва  всяка  естествена  или синтетична  вода . Практиката  
е да се използва  вода  от кладенец , чешмяна  вода  и изкуствена  среда  
(напр . среда  Elendt „M4“ или „M7“). Преди  употреба  водата  трябва  да 
бъде  аерирана . Ако е необходимо , водата  за отглеждане  може  да се 
обновява , като се внимателно  се излива  или изсмуква  използваната  
вода  от съдовете  за отглеждане , без да се унищожават  тръбичките  на 
ларвите . 
Хранене  на ларвите  
4. Ларвите  на Chironomus  трябва  да се хранят  с храна  за риба  на люспи  
(Tetra Min®, Tetra Phyll® или друга  подобна  търговска  марка  храна  за 
риба ) по около  250 mg на съд на ден. Храната  може  да се дава като сух 
смлян  прах  или като суспензия  във вода : 1,0 g храна  във вид на люспи  
се добавя  към 20 ml вода  за разреждане  и се разбърква , за да образува  
хомогенна  смес . Така  полученият  препарат  може  да се дава в 
количество  от около  5 ml на съд дневно  (като се разбърква  преди  
употреба ). По-старите  ларви  могат  да получават  повече  храна . 
5. Храненето  се определя  съобразно  качеството  на водата . Ако средата  за 
отглеждане  стане  мътна , количеството  храна  трябва  да се намали . 
Добавянето  на храна  се следи  внимателно . Даването  на прекалено  
малко  храна  ще предизвика  миграция  на ларвите  в обема  на водата , а 
твърде  много  храна  ще предизвика  увеличаване  на дейността  на 
микробите  и по-ниски  нива  на кислорода . И двете  обстоятелства  
могат  да доведат  до по-ниска  скорост  на развитие . 
6. Могат  също  да се добавят  и клетки  от някои  зелени  водорасли  (напр . 
Scenedesmus subspicatus , Chlorella vulgaris ), когато  се подготвят  нови  
съдове  за отглеждане . 
Хранене  на имагиниралите  възрастни  
7. Някои  експериментатори  изказват  идеята , че тампон  от памук , напоен  с 
наситен  разтвор  на захароза  може  да се използва  за хранене  на дост­  
игналите  до стадий  на имаго  възрастни . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1412
 
Имагиниране  
8. При температура  от 20 °С ± 2 °С след  приблизително  13—15 дни от 
съдовете  за отглеждане  на ларви  ще започнат  да имагинират  
възрастните  насекоми . Мъжките  лесно  се разпознават  по това, че 
имат  перести  антени . 
Агломерати  от яйца  
9. Щом  в съдовете  за развъждане  се поставят  възрастни  насекоми , всички  
съдове  за отглеждане  трябва  да се проверяват  три пъти  седмично  за 
наличие  на пихтиести  маси  яйца . Ако са налице , масите  яйца  следва  да 
бъдат  внимателно  отстранени . Те следва  да се преместят  в малко  
блюдо , съдържащо  проба  от водата  за развъждане . Масите  яйца  се 
използват  за създаване  на нов съд за отглеждане  (напр . 2—4 маси  
яйца /съд) или се използват  в изпитванията  за токсичност . 
10. След  2—3 дни следва  да се излюпят  ларви  от първи  стадий . 
Създаване  на нови  съдове  за отглеждане  
11. След  като е сложено  началото  на отглеждането , следва  да е възможно  
да се създава  нов съд за отглеждане  на ларви  всяка  седмица  или по- 
рядко , в зависимост  от изискванията  на изпитването , като старите  
съдове  се изваждат  от изпитването , след  като преобразяването  на 
ларвите  в имаго  е завършило . Използването  на тази система  
позволява  редовно  получаване  на възрастни  насекоми  с минимална  
организация . 
Приготвяне  на разтвори  за изпитване  „М4“ и „М7“ 
12. В Elendt (1990) е описана  среда  „М4“. Среда  „М7“ се приготвя  като 
„М4“, освен  по отношение  на указаните  в таблица  1 вещества , при 
които  се използват  концентрации , четири  пъти  по-ниски , отколкото  
използваните  в „М4“. Подготвя  се публикация  за среда  „М7“ (Elendt, 
лично  съобщение ). Разтворът  за изпитване  не трябва  да се приготвя  
според  Elendt and Bias (1990), тъй като концентрациите  на NaSiO  3 
5H 2 O, NaNO  3 , KH  2 PO 4 и K  2 HPO  4 , посочени  за приготвянето  на 
изходния  разтвор , не са подходящи . 
Приготвяне  на среда  „М7“ 
13. Всеки  изходен  разтвор  (I) се приготвя  отделно  и със изходните  
разтвори  (I) се приготвя  комбиниран  изходен  разтвор  (II) (вж. 
таблица  1). За получаване  на среда  „М7“ 50 ml от комбинирания  
изходен  разтвор  (II) и посочените  в таблица  2 количества  от 
изходните  разтвори  на макрохранителни  вещества  се допълват  до 1 
литър  с дейонизирана  вода . Приготвя  се изходен  разтвор  на 
витамини , като се добавят  трите  витамина , както  е посочено  в 
таблица  3, към дейонизирана  вода , и 0,1 ml от комбинирания  изходен  
разтвор  на витамини  се добавя  към крайната  среда  „М7“ малко  преди  
употреба . (Стандартният  разтвор  на витамини  се съхранява  замразен  на 
малки , съразмерни  части ). Средата  се аерира  и стабилизира . 
Таблица  1 
Изходни  разтвори  на микроелементи  за среди  М4 и М7 
Изходни  разтвори  (I) Количество  
(mg), 
разреждано  до 1 
l с дейонизирана  
вода  За приготвянето  на комбинирания  
изходен  разтвор  (II): смесват  се 
следните  количества  (ml) от всеки  
от изходните  разтвори  (I) и се 
долива  до 1 литър  дейонизирана  
вода  Крайна  концентрации  в 
разтворите  за изпитване  (mg/l) 
M4 M7 M4 M7  
H 3 BO 3 ( 1 ) 57 190 1,0 0,25 2,86 0,715 
MnCl  2 · 4H  2 O (  1 ) 7 210 1,0 0,25 0,361 0,090 
LiCl (  1 ) 6 120 1,0 0,25 0,306 0,077  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1413
 
Изходни  разтвори  (I) Количество  
(mg), 
разреждано  до 1 
l с дейонизирана  
вода  За приготвянето  на комбинирания  
изходен  разтвор  (II): смесват  се 
следните  количества  (ml) от всеки  
от изходните  разтвори  (I) и се 
долива  до 1 литър  дейонизирана  
вода  Крайна  концентрации  в 
разтворите  за изпитване  (mg/l) 
M4 M7 M4 M7  
RbCl (  1 ) 1 420 1,0 0,25 0,071 0,018 
SrCl  2 · 6H  2 O (  1 ) 3 040 1,0 0,25 0,152 0,038 
NaBr (  1 ) 320 1,0 0,25 0,016 0,004 
Na 2 MoO  4 · 2H  2 O (  1 ) 1 260 1,0 0,25 0,063 0,016 
CuCl  2 · 2H  2 O (  1 ) 335 1,0 0,25 0,017 0,004 
ZnCl  2 260 1,0 1,0 0,013 0,013 
CaCl  2 · 6H  2 O 200 1,0 1,0 0,010 0,010 
KI 65 1,0 1,0 0,0033 0,0033 Na
 2 SeO  3 43,8 1,0 1,0 0,0022 0,0022 
NH  4 VO  3 11,5 1,0 1,0 0,00058 0,00058 
Na2EDTA · 2H  2 O (  1 ) ( 2 ) 5 000 20,0 5,0 2,5 0,625 
FeSO4 · 7H  2 O (  1 ) ( 2 ) 1 991 20,0 5,0 1,0 0,249  
( 1 ) Тези  вещества  се различават  в М4 и М7, както  е посочено  по-долу . 
( 2 ) Разтворите  се приготвят  отделно , изливат  се заедно  и незабавно  се автоклавират . 
Таблица  2 
Изходни  разтвори  на макрохранителни  вещества  за среди  М4 и М7 
Количество , 
разреждано  до 1 l с 
дейонизирана  вода  
(mg) Изходни  разтвори  на 
макрохранителни  
вещества , добавяни  за 
приготвяне  на среди  М4 и 
М7 
(mg/l) Крайни  конце­  
нтрации  в разтвори  
за изпитване  М4 и 
М7 
(mg/l)  
CaCl  2 · 2H  2 O 293 800 1,0 293,8 
MgSO  4 · 7H  2 O 246 600 0,5 123,3 
KCl 58 000 0,1 5,8 NaHCO
 3 64 800 1,0 64,8 
NaSiO  3 · 9H  2 O 50 000 0,2 10,0 
NaNO  3 2 740 0,1 0,274 
KH  2 PO 4 1 430 0,1 0,143 
K 2 HPO  4 1 840 0,1 0,184  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1414
 
Таблица  3 
Изходни  разтвори  на витамини  за среди  М4 и М7 
Събират  се всички  три разтвора  на витамини , за да се приготви  един  общ изходен  разтвор  на 
витамини  
Количество , 
разреждано  до 1 l с 
дейонизирана  вода  
(mg) Количество  разтвор  на 
витамини , добавяно  за 
приготвяне  на среди  М4 и 
М7 
(mg/l) Крайни  концентрации  
в разтвори  за 
изпитване  М4 и М7 
(mg/l)  
Тиаминхидрохлорид  750 0,1 0,075 
Цианокобаламин  (B12) 10 0,1 0,0010 
Биотин  7,5 0,1 0,00075  
ПРЕПРАТКИ  
BBA (1995). Long-term toxicity test with Chironomus riparius: Development and 
validation of a new test system. Edited by M. Streloke and H.Köpp. Berlin 1995.  
Elendt BP (1990). Selenium Deficiency in Crustacean.  Protoplasma  154: 25-33.  
Elendt BP and Bias W-R (1990). Trace Nutrient Deficiency in  Daphnia magna  
Cultured in Standard Medium for Toxicity Testing. Effects on the Optimization 
of Culture Conditions on Life History Parameters of  D. magna . Water Research  
24 (9): 1157-1167.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1415
 
Допълнение  3 
ПРИГОТВЯНЕ  НА СИНТЕТИЧЕН  СЕДИМЕНТ  
Състав  на седимента  
Съставът  на синтетичния  седимент  е, както  следва : 
Съставка  Характеристики  Процент  от сухото  
тегло  на седимента  
Торф  Торф  от торфен  мъх, с рН 
възможно  най-близо  до 
5,5—6,0 без видими  
остатъци  от растения  и 
фино  смлян  (размер  на 
частиците  ≤ 1 mm) и 
изсушен  на въздух  4–5 
Кварцов  пясък  Размер  на зърната : > 50 % 
от частиците  следва  да 
бъдат  в интервала  
50—200 μm 75–76 
Каолин  Съдържание  на каолинит  ≥ 
30 % 20 
Органичен  въглерод  Коригира  се чрез добавяне  
на торф  и пясък  2 (±0,5) 
Калциев  карбонат  CaCO  3 на прах , химически  
чист  0,05 - 0,1 
Вода  Проводимост  ≤ 10 μЅ/cm 30 - 50  
Приготвяне  
Торфът  се изсушава  с въздух  и се смила  на фин прах . Приготвя  се 
суспензия  от желаното  количество  торф  на прах  в дейонизирана  вода , 
като се използва  високопроизводително  хомогенизиращо  устройство . Като  
се използва  CaCO  3 , рН на суспензията  се коригира  до 5,5 ± 0,5. 
Суспензията  се аклиматизира  най-малко  два дни при 20 °С ± 2 °С, като 
се разбърква  леко , за да се стабилизира  рН и да се създаде  стабилна  
микробна  среда . Отново  се измерва  рН, което  трябва  да бъде  6,0 ± 0,5. 
След  това торфената  суспензия  се смесва  с другите  съставки  (пясък  и 
каолин ) и дейонизирана  вода , за да се получи  хомогенен  седимент  със 
съдържание  на вода  в интервала  30—50 % от сухото  тегло  на седимента . 
Измерва  се отново  рН на крайната  смес  и, ако е необходимо , се коригира  до 
6,5—7,5 с CaCO  3 . Вземат  се проби  от седимента , за да се определи  сухото  
тегло  и съдържанието  на органичен  въглерод . Освен  това, препоръчва  се 
преди  използването  му в изпитване  за токсичност  за хирономиди , 
изкуственият  седимент  да бъде  аклиматизиран  в продължение  на седем  
дни при същите  условия , при които  ще се провежда  изпитването . 
Съхранение  
Сухите  съставки  за приготвянето  на изкуствения  седимент  могат  да се 
съхраняват  в сухо  и хладно  място  при стайна  температура . Приготвеният  
(влажен ) седимент  не трябва  да се съхранява  преди  употребата  му в 
изпитване . Той следва  да се употребява  незабавно  след  7-дневния  период  
за аклиматизация , с който  завършва  приготвянето  му. 
ПРЕПРАТКИ : 
Глава  В.8 от настоящото  приложение , Токсичност  за земни  червеи . 
Meller M, Egeler P, Rombke J, Schallnass H, Nagel R, Streit B (1998). 
Short-term Toxicity of Lindane, Hexachlorobenzene and Copper Sulfate on Tubificid Sludgeworms (Oligochaeta) in Artificial Media. Ecotox. and Environ. Safety 39: 10-20.
 ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1416
 
Допълнение  4 
Химични  характеристики  на приемлива  вода  за разреждане  
Вещество  Концентрации  
Твърди  частици  < 20 mg/l 
Общ  органичен  въглерод  < 2 mg/l 
Нейонизиран  амоняк  < 1 μg/l 
Твърдост , изразена  като CaCO  3 < 400 mg/l (*) 
Остатъчен  хлор  < 10 μg/l 
Общо  органофосфорни  пестициди  < 50 ng/l 
Общо  органохлорни  пестициди  плюс  поли­  
хлорирани  бифенили  < 50 ng/l 
Общ  органичен  хлор  < 25 ng/l  
(*) Трябва  обаче  да се отбележи , че ако се предполага  взаимодействие  между  йоните , 
от които  произтича  твърдостта , и изпитваното  вещество , следва  да се използва  
вода  с по-ниска  твърдост  (и затова  в този случай  не трябва  да се използва  среда  
„Elendt M4“).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1417
 
Допълнение  5 
Насоки  за наблюдение  на имагинирането  на ларвите  на хирономидите  
Върху  бехеровите  чаши , в които  се провежда  изпитването , се поставят  
уловители  за достигнали  до стадия  на имаго  насекоми . Уловителите  са 
необходими  от 20-ия ден на изпитването  до края  му. Примерно  устройство  
на уловителя  е показано  по-долу :
 
A: найлоново  платно  
B: обърнати  пластмасови  панички  
C: чаша  за експозиция  без улей  D: екранирани  отвори  за смяна  на водата  
E: вода  
F: седимент  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1418
 
В.29. ЛЕСНА  БИОРАЗГРАДИМОСТ  — CO  2 В ЗАПЕЧАТАНИ  
СЪДОВЕ  (ИЗПИТВАНЕ  В СВОБОДНОТО  ПРОСТРАНСТВО  НАД  
ТЕЧНОСТТА ) 
УВОД  
1. Настоящият  метод  е еквивалентен  на Насоките  за изпитване  (НИ) на 
ОИСР  310 (2006). Настоящият  метод  за изпитване  е пресяващ  метод  за 
оценка  на лесната  биоразградимост  на химикалите , като с него  се 
получава  информация , подобна  на получаваната  с методите , описани  
в глава  В.4 от настоящото  приложение  А—Е. Поради  това, даден  
химикал , който  има добри  резултати  при настоящия  метод  за 
изпитване , може  да се смята  за лесно  биоразградим  и следователно  
бързо  разградим  в околната  среда . 
2. Добре  разработеният  метод  с използване  на въглероден  диоксид , 
основан  на оригиналното  изпитване  на Sturm (2) за оценка  на 
биоразградимостта  на органични  химикали  чрез измерване  на 
въглеродния  диоксид , получен  в резултат  от дейността  на микробите , 
обикновено  се предпочита  за изпитване  на малко  разтворими  и силно  
адсорбируеми  химикали  Той се избира  и за разтворими  (но не летливи ) 
химикали , тъй като много  изследователи  смятат , че излъчването  на 
въглероден  диоксид  е единственото  еднозначно  доказателство  на 
микробна  активност . Елиминирането  на разтворения  органичен  
въглерод  може  да се осъществи  чрез физични  и химични  процеси  — 
адсорбция , изпаряване , утаяване , хидролиза , както  и в резултат  на 
микробна  активност  и много  небиологични  реакции , които  поглъщат  
кислород ; абиотичното  получаване  на въглероден  диоксид  от 
органични  химикали  се среща  рядко . в оригиналното  и в модиф­  
ицираното  изпитване  на Sturm (1)(2) CO  2 се отделя  от течната  фаза  в 
абсорбиращи  съдове  чрез барботиране  (т.е., пропускане  на мехурчета  
въздух  през течната  фаза  за отделяне  на CO  2 ), а във версията  на Larson 
(3)(4) CO  2 се пренася  от реакционния  съд към абсорбери  с помощта  на 
въздух , несъдържащ  CO  2 , който  преминава  през пространството  над 
течната  фаза , като освен  това изпитвателният  съд непрекъснато  се 
разклаща . Реакционният  съд се разклаща  само  в модификацията  на 
Larson; в ISO 9439 (5) и в оригиналната  версия  от САЩ  (6) 
разбъркване  се посочва  само  за неразтворими  вещества , като и двата  
източника  предписват  по-скоро  барботиране , отколкото  замяна  на 
газовата  фаза  от пространството  над течната . В друг  официален  
метод  (7) на Агенцията  на САЩ  за защита  на околната  среда  (US 
EPA), разработен  въз основа  на метода  на Gledhill (8), разклащаният  
реакционен  съд е изолиран  от атмосферата , и произведеният  CO  2 се 
събира  във вътрешен  алкален  уловител  директно  от газовата  фаза , 
както  в класически  респирометър  на Warburg/Barcroft.  
3. Доказано  е обаче , че неорганичният  въглерод  (IC) се натрупва  в 
средата  при провеждане  на стандартно  или модифицирано  изпитване  
на Sturm (9) върху  редица  химикали . При разграждане  на 20 mg С/l 
анилин  са установени  концентрации  на IC, достигащи  до 8 mg/l. 
Поради  това, събирането  нa CO  2 в алкалните  уловители  не отразява  
вярно  количеството  CO  2 , произвеждано  от микроорганизмите  в 
различни  междинни  моменти  по време  на разграждането . В резултат  
на това изискването , според  което  > 60 % от теоретично  максималната  
продукция  на CO  2 (ThCO  2 ) трябва  да бъде  получена  в рамките  на „10- 
дневен  период “ (десетте  дни непосредствено  след  достигането  на 
биоразграждане  от 10 %), за да може  изпитваният  химикал  да бъде  
класифициран  като лесно  биоразградим , няма  да може  да бъде  удовл­  
етворено  за някои  химикали , които  биха  били  класифицирани  като 
такива , ако се използва  методът , основан  на елиминирането  на разт­  
ворения  органичен  въглерод  (DOC).  
4. Когато  процентът  на разграждане  е с по-ниска  от очакваната  стойност , 
вероятно  е IC да се натрупва  в изпитвания  разтвор . В такъв  случай  
разградимостта  може  да се оценява  с помощта  на други  изпитвания  за 
лесна  биоразградимост . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1419
 
5. Други  недостатъци  на метода  на Sturm ( обременителен , изискващ  
много  време , по-податлив  на лабораторни  грешки  и неприложим  за 
летливи  химикали ) дадоха  тласък  на търсене  на техника  с херметично  
затворен  съд, различна  от тази на Gledhill, а не такава  с преминаващ  газ 
(10)(11). Boatman et al (12) преразгледаха  по-ранните  методи  и 
възприеха  затворена  система  със свободно  пространство , в която  CO  2 
се освобождава  в свободното  пространство  след  инкубация  с помощта  
на ацидификация  на средата . CO  2 се измерваше  с газово -хромат­  
ографски  (ГХ) анализ  (газова  хроматография /йонна  хроматография , 
GC/IC) на автоматично  вземани  проби  от свободното  пространство , 
но не се вземаше  предвид  разтвореният  неорганичен  въглерод  (DIC) 
в течната  фаза . Освен  това, използваните  съдове  бяха  твърде  малки  
(20 ml) и съдържаха  само  10 ml среда , което  предизвикваше  
проблеми , напр . при добавянето  на по необходимост  много  малки  
количества  неразтворими  изпитвани  химикали , и/или поради  възмож­  
ността  в инокулираната  среда  да няма  достатъчно  (или изобщо ) 
микроорганизми , способни  да разграждат  изпитвания  химикал . 
6. Посочените  трудности  бяха  преодолени  с независимите  изследвания  на 
Struijs и Stoltenkamp (13) и на Birch и Fletcher (14), като последните  се 
ръководеха  от опита  си от работата  с апарат , използван  при 
изпитването  за анаеробно  биоразграждане  (15). При първия  метод  
(13) CO  2 се измерва  в свободното  пространство  след  ацидификация  и 
уравновесяване , докато  при втория  (14) разтвореният  неорганичен  
въглерод  се измерва  в течната  и в газообразната  фаза , но без обработка ; 
над 90 % от получения  IC се намира  в течната  фаза . И двата  метода  
имат  предимства  по отношение  на метода  на Sturm, състоящи  се в това, 
че системата  е по-компактна  и с нея се работи  по-лесно , летливите  
химикали  могат  да се изпитват  и се избягва  опасността  от забавяне  
на измерването  на произведения  CO  2 . 
7. Двата  подхода  са обединени  в стандарта  на ISO (изпитване  на CO  2 в 
свободно  пространство ) (16), който  е бил предмет  на кръгово  
изпитване  (17) и който  е основата  на настоящия  метод  за изпитване . 
В метода  за изпитване  на US EPA също  така са били  използвани  и 
двата  подхода  (18). Бяха  препоръчани  два метода  за измерване  на CO  2 , 
а именно  измерване  на CO  2 в свободното  пространство  над течността  
след  ацидификация  (13) и измерване  на IC в течната  фаза  след  доба­  
вянето  на излишък  на основа . Последният  беше  въведен  от Peterson в 
извършваното  от CONCAWE (19) кръгово  изпитване  на метода  за 
изпитване  в свободното  пространство  над течността , изменен  с оглед  
на измерването  на присъщата  биоразградимост . Измененията , въведени  
от преразгледаната  версия  от 1992 г. (20) на методите  от глава  В.4 на 
настоящото  приложение  по отношение  на лесната  биоразградимост , 
бяха  включени  в настоящия  метод  за изпитване , така че условията  
(среда , продължителност  и т.н.) са същите  като онези  в модиф­  
ицираното  изпитване  на Sturm (20). Birch и Fletcher (14) показаха , че 
по отношение  на едни  и същи  химикали  изпитването  в свободното  
пространство  над течността  дава много  сходни  резултати  с 
извършеното  от ОИСР  кръгово  изпитване  (21) на преразгледаните  
методи  за изпитване . 
ПРИНЦИП  НА МЕТОДА  ЗА ИЗПИТВАНЕ  
8. В буферна  среда  с минерални  соли , инокулирана  със смесена  
популация  микроорганизми , се инкубира  изпитваният  химикал , обик­  
новено  при 20 mg С/l, като единствен  източник  на въглерод  и енергия , 
Изпитването  се извършва  в херметично  затворени  стъкла  с оставено  
свободно  пространство  над течността , което  служи  за резервоар  на 
кислород  за аеробно  биоразграждане . Отделянето  на CO  2 , получен  в 
резултат  на окончателното  аеробно  биоразграждане  на изпитвания  
химикал , се определя  чрез измерване  на IC, отделен  в стъклата  за 
изпитване  над количеството  на IC, получен  в контролните  стъкла , 
които  съдържат  само  инокулирана  среда . Степента  на биоразграждане  
се изразява  като процент  от теоретично  максималната  продукция  на IC 
(ThIC), въз основа  на количеството  на добавения  в началото  изпитван  
химикал  (изразен  като органичен  въглерод ). 
9. Мога  да се измерят  също  и елиминирането  на DOC и/или степента  на 
първично  биоразграждане  на изпитвания  химикал  (20).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1420
 
ИНФОРМАЦИЯ  ЗА ИЗПИТВАНИЯ  ХИМИКАЛ  
10. Трябва  да се установи  — от химичната  структура  или от измерване  — 
съдържанието  на органичен  въглерод  (% w/w) на изпитвания  химикал , 
така че да може  да се изчисли  процентът  на разграждане . За летливите  
изпитвани  химикали , измерената  или изчислената  стойност  на 
константата  от закона  на Хенри  може  да бъде  полезна  при определянето  
на съотношението  между  обемите  на течността  и свободното  
пространство . За избора  на подходяща  концентрация  на изпитване  и за 
тълкуването  на резултати , показващи  слаба  биоразградимост , е полезно  
да се разполага  с информация  за токсичността  на изпитвания  химикал  за 
микроорганизмите : препоръчва  се да се включи  контролен  съд за 
отчитане  на инхибирането , освен  ако не е известно , че изпитваният  
химикал  не инхибира  дейността  на микроорганизмите . 
ПРИЛОЖИМОСТ  НА МЕТОДА  
11. Изпитването  е приложимо  към разтворими  и към неразтворими  във 
вода  изпитвани  химикали , но следва  да се осигури  добро  диспергиране  
на изпитвания  химикал . Като  се използва  препоръчаното  обемно  съот­  
ношение  от 1:2 между  свободно  пространство  и течност , могат  да се 
изпитват  и летливи  химикали  с константа  от закона  на Хенри  до 50 
Pa.m  3 .mol  –1 , тъй като частта  на изпитвания  химикал  в свободното  
пространство  няма  да надхвърли  1 % (13). Може  да се използва  и 
свободно  пространство  с по-малък  обем , когато  се изпитват  химикали  
с по-голяма  летливост , но тяхната  бионаличност  може  да се окаже  
ограничаващ  фактор , особено  ако са малко  разтворими  във вода . 
Трябва  обаче  да се следи  обемното  съотношение  между  свободното  
пространство  и течността  и концентрацията  на изпитвания  химикал  
да бъдат  такива , че да е налице  достатъчно  кислород , който  да даде  
възможност  за осъществяване  на пълно  аеробно  биоразграждане  (т.е., 
да се избягва  използването  на висока  концентрация  на субстрата  и 
малко  свободно  пространство ). Насоки  по тези въпроси  може  да се 
намерят  в (13)(23).  
РЕФЕРЕНТНИ  ХИМИКАЛИ  
12. За да се провери  процедурата  на изпитване , следва  успоредно  да се 
изпита  и референтен  химикал , чиято  биоразградимост  е известна . За 
тази цел при изпитването  на разтворими  във вода  химикали  могат  да се 
използват  анилин , натриев  бензоат  или етиленгликол , а за малко  разт­  
воримите  изпитвани  химикали  — 1-октанол  (13). Биоразграждането  на 
посочените  химикали  трябва  да достигне  > 60 % от ТhIC в рамките  на 
14 дни. 
ВЪЗПРОИЗВОДИМОСТ  
13. В кръговото  изпитване  на метода , извършено  от ISO (17), бяха  
получени  следните  резултати  при използване  на препоръчаните  
условия , в това число  20 mg С изпитван  химикал /l. 
Изпитван  химикал  Среден  процент  на 
биоразграждане  
(28 дни) Коефициент  на 
вариация  
(%) Брой  на 
лабораториите  
Анилин  90 16 17 
1-октанол  85 12 14  
Варирането  в рамките  на изпитването  (повторяемост ), когато  се 
използва  анилин , е ниско , с коефициенти  на вариране , не по-големи  
от 5 % в почти  всички  опити . В двата  случая , когато  повторяемостта  е 
била  по-лоша , по-голямото  вариране  вероятно  е било  причинено  от 
висока  продукция  на IC в празните  проби . Повторяемостта  е била  по- 
лоша  с 1-октанол , но въпреки  това е била  по-ниска  от 10 % в 79 % от 
опитите . Това  по-голямо  вариране  в рамките  на изпитването  може  да е 
било  причинено  от грешки  в дозирането , поради  малкия  обем  (3 до 4 
μl) 1-октанол , който  е трябвало  да бъде  инжектиран  в запечатаните  
изпитвателни  стъкла . Ако се използват  по-ниски  концентрации  на 
изпитваните  химикали , биха  се получили  по-високи  коефициенти  на 
вариация , особено  при концентрации , по-ниски  от 10 mg С/l. Този  
проблем  би могъл  да се преодолее  частично  с намаляване  на конце­  
нтрацията  на общия  неорганичен  въглерод  (TIC) в инокулума . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1421
 
14. В извършено  от ЕС (24) кръгово  изпитване  на пет повърхност­  
ноактивни  вещества , добавени  в концентрация  от 10 mg С/l, бяха  
получени  следните  резултати : 
Изпитван  химикал  Среден  процент  на 
биоразграждане  
(28 дни) Коефициент  
на вариация  
(%) Брой  на 
лабораториите  
Тетрапропилен  
Бензенсулфонат  17 45 10 
Диизооктилсулфо  
сукцинат  
(анионен ) 72 22 9 
Хексадецилтрим­  
етил  (*) 
Амониев  хлорид  
(катионен ) 75 13 10 
Изононилфенол  
(етоксилат ) 9 
(нейонен  41 32 10 
Кокоамидпропил  
диметилхидрокси  
сулфобетаин  
(амфотерен ) 60 23 11  
(*) Беше  добавен  SiO  2 за неутрализиране  на токсичността . 
Резултатите  показват , че по принцип , варирането  е по-високо  за по- 
малко  разградимите  повърхностноактивни  вещества . Варирането  в 
рамките  на изпитването  е било  по-ниско  от 15 % за над 90 % от 
случаите , а най-високата  му стойност  е достигала  30—40 %.  
ЗАБЕЛЕЖКА : Повечето  повърхностноактивни  вещества  не са 
съставени  от молекули  от само  един  вид, а са смеси  
от изомери , хомолози  и т.н., които  се разграждат  след  
различни  характерни  латентни  периоди  и с различна  
скорост , което  води  до неясни , неубедителни  криви , 
така че прагът  от 60 % може  да не бъде  достигнат  в 
рамките  на „10-дневния  период “, дори  ако молекулите  
от всеки  отделен  вид биха  достигнали  60 %, ако бъдат  
изпитани  поотделно . Това  може  да се наблюдава  и с 
други  сложни  смеси . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Апаратура  
15. Стандартна  лабораторна  апаратура , както  и: 
а) стъкла  за серум , запечатани  със запушалки  от бутилов  каучук  и 
алуминиеви  капачки . Препоръчаният  размер  е 125 ml, с обща  
вместимост  около  160 ml ( в този случай  обемът  на всяко  стъкло  
трябва  да бъде  160 ± 1 ml). Може  да се използва  стъкло  с по- 
малък  размер , ако резултатите  удовлетворяват  условията , описани  
в точки  66 и 67; 
б) анализатор  за въглерод  или друг  инструмент  (напр . газов  хромат­  
ограф ) за измерване  на неорганичния  въглерод ; ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1422
 
в) високоточни  спринцовки  за пробите  от газове  и течности ; 
г) орбитална  клатачна  машина  в среда  с контролирана  температура ; 
д) източник  на въздух  без CO  2 — такъв  въздух  може  да се приготви  
чрез пропускане  на въздух  през гранули  натронкалк , или се използва  
газова  смес  от 80 % N  2 /20 % /0  2 (по избор ) (вж. точка  28);  
е) уред  за мембранно  филтруване  с пори  с размер  0,20—0,45 μm (по 
избор ); 
ж) анализатор  на органичен  въглерод  (по избор ). 
Реагенти  
16. Използват  се само  чисти  за анализ  реагенти . 
Вода  
17. Използва  се дестилирана  или дейонизирана  вода , която  съдържа  ≤ 1 
mg/l общ органичен  въглерод . Това  представлява  ≤ 5 % от началното  
съдържание  на органичен  въглерод , въведен  с предписаната  доза от 
изпитвания  химикал . 
Изходни  разтвори  за средата  от минерални  соли  
18. Изходните  разтвори  и средата  от минерални  соли  са сходни  с 
използваните  в ISO 14593 (16) и в изпитванията  за „лесна  
биоразградимост “ В.4 (20). Употребата  на по-високи  концентрации  
амониев  хлорид  (2,0 g/l вместо  0,5 g/l) би била  необходима  само  в 
изключителни  случаи , напр . когато  концентрацията  на изпитвания  
химикал  е > 40 mg С/l. Изходните  разтвори  следва  да се съхраняват  
на студено  и да се унищожават  след  шест  месеца  или по-рано , ако се 
забележи  утаяване  или размножаване  на микроби . Приготвят  се 
следните  изходни  разтвори : 
а) Калиев  дихидрогенфосфат  (KH  2 PO 4 ) 8,50 g  
Дикалиев  хидрогенфосфат , (K  2 HPO  4) 21,75 g  
Динатриев  хидрогенфосфат  дихидрат  (Na  2 HPO  4 ·2H 2 O) 33,40 g  
Амониев  хлорид , (NH  4 Cl) 0,50 g  
Съставките  се разтварят  във вода  и се долива  вода  до 1 литър . 
Стойността  на рН на разтвора  следва  да бъде  7,4 (± 0,2). Ако това 
условие  не е изпълнено , се приготвя  нов разтвор . 
б) Калциев  хлорид  дихидрат  (CaCl  2 ·2H 2 O) 36,40 g  
Разтваря  се във вода  и се долива  вода  до 1 литър . 
в) Магнезив  сулфат  хептахидрат  (MgSO  4 ·7H 2 O) 22,50 g  
Разтваря  се във вода  и се долива  вода  до 1 литър . 
г) Железен (III) хлорид  хексахидрат  (FеСl 3 ·6Н 2 О) 0,25 g  
Съставките  се разтварят  във вода , долива  се вода  до 1 литър  и се 
добавя  една  капка  концентрирана  HCl.  
Приготвяне  на минерална  среда  
19. Смесват  се 10 ml от разтвор  а) с приблизително  800 ml вода  (точка  17), 
прибавя  се по 1 ml от разтвори  от б) до г) и се долива  вода  до 1 l 
(точка 17). 
Други  реагенти  
20. Концентрирана  ортофосфорна  киселина  (H 3 PO 4 ) (> 85 % маса  на обем ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1423
 
Разтвор  на натриев  хидроксид  7М 
21. 280 g натриев  хидроксид  (NaOH) се разтварят  в 1 литър  вода  (точка  
17). Определя  се концентрацията  на разтворения  неорганичен  въглерод  
на получения  разтвор  и тази стойност  се взема  предвид  при изчис­  
ляването  на резултатите  от изпитването  (вж. точки  55 и 61), по- 
специално  по отношение  на критерия  за валидност , посочен  в точка  
66, б). Ако концентрацията  на разтворения  неорганичен  въглерод  е 
прекалено  висока , приготвя  се нов разтвор . 
Изпитвано  вещество  
22. От достатъчно  разтворим  във вода  изпитван  химикал  се приготвя  
изходен  разтвор  във вода  (точка  17) или в средата  за изпитване  
(точка  19) при концентрация  100 пъти  по-висока  от крайната  конце­  
нтрация , която  ще се използва  в изпитването ; може  да се наложи  да се 
коригира  рН на изходния  разтвор . Стандартният  разтвор  трябва  се 
добави  към минералната  среда , за да се получи  крайна  концентрация  
на органичен  въглерод  между  2 и 40 mg С/l, за предпочитане  20 mg С/l. 
Ако се използват  концентрации  по-ниски  от посочените , получената  
точност  може  да бъде  по-ниска . Разтворимите  и неразтворимите  
течни  химикали  могат  да се добавят  в съдовете  директно , като се 
използват  високоточни  спринцовки . Малко  разтворимите  и неразт­  
воримите  изпитвани  химикали  могат  да наложат  специално  третиране  
(25). Възможностите  са следните : 
а) директно  добавяне  на количества  с известно  тегло ; 
б) диспергиране  с ултразвук  преди  добавянето ; 
в) диспергиране  с помощта  на емулгатори , по отношение  на които  
преди  добавянето  следва  да се установи  дали  имат  инхибиращо  
или стимулиращо  въздействие  върху  активността  на микроорга­  
низмите ; 
г) адсорбция  на течните  изпитвани  химикали  или разтваряне  в 
подходящ  летлив  разтворител , върху  инертна  среда  или подложка  
(напр . филтър  от стъклена  вата), последвани  от изпаряване  на разт­  
ворителя , ако е използван  такъв , и директно  добавяне  на известните  
количества ; 
д) добавяне  на известен  обем  от разтвор  на изпитвания  химикал  в 
лесно  изпаряващ  се разтворител  в празен  съд за изпитване , 
последвано  от изпаряване  на разтворителя . 
Трябва  да се извърши  изпитване  дали  агентите  или разтворителите , 
използвани  във в), г) и д), имат  стимулиращо  или инхибиращо  възде­  
йствие  върху  микроорганизмите  (вж. точка  42, б). 
Референтен  химикал  
23. Приготвя  се изходен  разтвор  от (разтворим ) референтен  химикал  във 
вода  (точка  17) при концентрация  за предпочитане  100 пъти  по-висока  
от крайната  концентрация  (20 mg C/l), която  ще се използва  в 
изпитването . 
Проверка  за инхибиращи  свойства  
24. Често  пъти  изпитваните  химикали  не се разграждат  в достатъчна  
степен  при условията , използвани  при оценката  на лесната  
биоразградимост . Една  от възможните  причини  е, че изпитваният  
химикал  има инхибиращо  въздействие  върху  инокулума  при конце­  
нтрацията , при която  се прилага  в изпитването . При планирането  на 
изпитването  може  да се предвиди  проверка  за инхибиращи  свойства  с 
оглед  да се улесни  идентификацията  (със задна  дата) на инхибирането  
като възможна  причина  или способстващ  фактор . Напротив , проверката  
за инхибиращи  свойства  може  да опровергае  подобни  интерференции  и 
да покаже , че слабото  или липсващо  разграждане  се дължи  единствено  
на неспособността  на микроорганизмите  да атакуват  веществото  при 
условията  на изпитването . За да се получи  информация  за токсичността  
на изпитвания  химикал  за (аеробните ) микроорганизми , трябва  да се 
приготви  разтвор  в средата  за изпитване , който  съдържа  изпитвания  
химикал  и референтния  химикал  (точка  19), всеки  в концентрацията , 
в която  са били  добавени  в средата  за изпитване  при изпитването  (вж. 
точки  22 и 23). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1424
 
Инокулум  
25. Инокулумът  може  да произхожда  от различни  източници : активна  
утайка ; изходящи  отпадъчни  води  (нехлорирани ); повърхностни  води  
и почви ; смес  от всичко  посочено  (20). Биоразграждащата  активност  на 
източника  следва  да се провери , като се използва  референтен  химикал . 
Независимо  от източника , не трябва  да се използват  микроорганизми , 
които  вече са били  изложени  на изпитвания  химикал , ако процедурата  
се използва  като изпитване  за лесна  биоразградимост . 
Предупреждение : Активната  утайка , изходящите  отпадъчни  води  и 
отпадъчните  води  съдържат  патогенни  организми  и 
с тях трябва  да се работи  внимателно . 
26. Въз основа  на опита , оптималният  обем  на инокулума  е този, който : 
— е достатъчен  да предизвика  адекватно  биоразграждане , 
— разгражда  референтния  химикал  до предвидения  процент  (вж. точка  
66), 
— осигурява  10  2 до 10  5 създаващи  колонии  единици  на милилитър  в 
крайната  смес , 
— обикновено  дава концентрация  от 4 mg/l суспендирани  твърди  
частици  в крайната  смес , когато  се използва  активна  утайка ; 
могат  да се използват  и концентрации  от 30 mg/l, но е възможно  
те да увеличат  значително  получаването  на CO  2 в контролните  
съдове  (26),  
— осигурява  по-малко  от 10 % от началната  концентрация  на орга­  
ничния  въглерод , внесен  с изпитвания  химикал , 
— е обикновено  1—10 ml инокулум  за 1 литър  разтвор  за изпитване . 
Активна  утайка  
27. Взема  се свежа  активна  утайка  от резервоара  за аериране  на пречиств­  
ателна  станция  за отпадъчни  води  или от лабораторен  модул , които  
преработват  предимно  битови  отпадъчни  води . Ако е необходимо , 
едрите  частици  следва  да се отделят  чрез пресяване  (напр ., като се 
използва  сито  с размер  на отворите  1 mm  2 ), а утайката  трябва  да се 
поддържа  при аеробни  условия , докато  се употреби . 
28. Друга  възможност  е след  премахване  на по-грубите  частици  утайката  
да се остави  да се утаи  или да се центрофугира  (например  при 1 100 g 
в продължение  на 10 min). Отстранява  се бистрият  разтвор . Калта  може  
да се промива  с минерална  среда . Концентрираната  утайка  се разрежда  
с минерална  среда  до концентрация  3—5 g суспендирани  вещества  на 
литър  и след  това се аерира , колкото  се изисква . 
29. Калта  трябва  да се вземе  от обикновена  добре  работеща  пречиствателна  
станция . Ако утайката  трябва  да бъде  взета  от силно  натоварена  преч­  
иствателна  станция , или има съмнение , че съдържа  инхибитори , тя 
трябва  да се промие . Ресуспендираната  утайка  се утаява  или 
центрофугира  след  старателно  разбъркване , отлива  се супернатантът  
и промитата  с нова  минерална  среда  утайка  отново  се ресуспендира . 
Тази  процедура  се повтаря , докато  се прецени , че утайката  е чиста  от 
странични  вещества  или инхибитор . 
30. След  достигане  на пълно  суспендиране  или при необработена  утайка , 
преди  употреба  се отделя  проба  за определяне  на сухото  тегло  на 
суспендираните  частици . 
31. Друга  възможност  е да се хомогенизира  активната  утайка  (3—5 g 
суспендирани  частици /l). Калта  се обработва  в механичен  
хомогенизатор  в продължение  на 2 min при средна  скорост . 
Хомогенизираната  утайка  се утаява  за 30 min или по-дълго , ако е 
необходимо , и течността  се отлива  и се използва  като инокулум  в 
концентрация  от около  10 mg/l в минерална  среда . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1425
 
32. Възможно  е да се намали  още повече  отделянето  на CO  2 в контролните  
съдове  без изпитван  химикал  чрез аериране  на утайката  в продължение  
на една  нощ, като се използва  несъдържащ  CO  2 въздух . Използваната  
концентрация  на инокулума  в това изпитване  трябва  да възлиза  на 4 
mg/l твърди  частици  от активната  утайка . 
Вторични  изходящи  отпадъчни  води  
33. Друга  възможност  е инокулумът  да се вземе  от вторични  изходящи  
води  на пречиствателна  станция  или от лабораторен  модул , 
получаващи  предимно  битови  отпадъчни  води . Пробата  се съхранява  
при аеробни  условия  и се използва  в деня , в който  е взета , или ако е 
необходимо , се аклиматизира . Изходящите  води  се филтруват  през груб  
филтър , за да се отделят  едрите  частици , измерва  се рН. 
34. За да се намали  съдържанието  на IC, филтратът  се барботира  един  час 
с въздух , несъдържащ  CO  2 (точка  15, д) и се поддържа  рН от 6,5 с 
помощта  на ортофосфорна  киселина  (точка  20). Стойността  на рН се 
връща  към изходната  с натриев  хидроксид  (точка  21) и след  утаяване  за 
около  1 час, подходящо  количество  от супернатанта  се отделя  за 
целите  на инокулацията . Барботирането  намалява  съдържанието  на IC 
на инокулума . Например , когато  за инокулум  се използва  
препоръчаният  максимален  обем  филтрувани  барботирани  изходящи  
води  (100 ml) на литър , количеството  IC в контролните  съдове  без 
изпитван  химикал  е в интервала  0,4—1,3 mg/l (14), което  представлява  
2—6,5 % от въглерода  на изпитвания  химикал  при 20 mg С/l и 4—13 % 
при 10 mg С/l. 
Повърхностни  води  
35. Взема  се проба  от подходящи  повърхностни  води . Тя се съхранява  при 
аеробни  условия  и се използва  в деня , в който  е взета . Пробата  се 
концентрира , ако е необходимо , с помощта  на филтруване  или 
центрофугиране . Обемът  на инокулума , който  трябва  да се използва  
във всеки  съд за изпитване , трябва  да отговаря  на критериите , 
посочени  в точка  26. 
Почви  
36. Взема  се проба  от подходяща  почва  на дълбочина  до 20 cm под 
повърхността  на почвата . Отстраняват  се камъните , остатъците  от 
растения  и безгръбначните  от пробата , след  което  тя се пресява  през 
сито  с размер  на отворите  от 2 mm (ако пробата  е твърде  влажна , за да 
бъде  незабавно  пресята , тя трябва  частично  да се изсуши  с въздух , за 
да се улесни  пресяването ). Тя се съхранява  при аеробни  условия  и се 
използва  в деня , в който  е взета  (ако пробата  се пренася  в хлабаво  
затворен  полиетиленов  чувал , тя може  да се съхранява  при 2—4 °С в 
същия  чувал  до 1 месец ). 
Предварителна  подготовка  на инокулум  
37. Иноколумът  може  да се адаптира  предварително  към условията  на 
експеримента , но не и към изпитвания  химикал . Предварителното  
адаптиране  може  да намали  отделянето  на CO  2 в съдовете  без 
химикал . Предварителната  подготовка  се изразява  в аериране  на 
активната  утайка  след  разреждане  с изпитвателна  среда  до достигане  
на стойност  от 30 mg/l, като се използва  влажен  въздух , несъдържащ  
CO 2 в оттока  в продължение  на най-много  5—7 дни при температурата  
на изпитването . 
ПРОЦЕДУРА  НА ИЗПИТВАНЕ  
Брой  стъкла : 
38. Броят  на стъклата  (точка  15, а), необходими  за изпитването , зависи  от 
честотата  на анализа  и продължителността  на изпитването . 
39. Препоръчва  се да се анализират  по три екземпляра  стъкла  след  дост­  
атъчен  брой  времеви  интервали , така че да е възможно  да се идент­  
ифицира  10-дневният  период . Също  така, анализират  се най-малко  пет 
изпитвателни  стъкла  (точка  15, а) от сериите  (а), (б) и (в), (вж. точка  
42) в края  на изпитването , за да се изчислят  доверителни  интервали  от 
95 % за средния  процент  на биоразграждане . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1426
 
Среда  с инокулум  
40. Инокулумът  се използва  в концентрация  от 4 mg/l сухо  твърдо  
вещество  от активна  утайка . Непосредствено  преди  употреба  се 
приготвя  достатъчно  количество  среда  с инокулум , като се прибавя  
например  2 ml подходящо  третирана  активна  утайка  (точки  27—32) 
при концентрация  2 000 ml/l в един  литър  среда  от минерални  соли  
(точка  19). Когато  се използват  вторични  изходящи  отпадъчни  води , 
добавят  се 100 ml изходящи  води  (точка  33) към 900 ml среда  от 
минерални  соли  (точка  19) и се долива  вода  до 1 литър . 
Подготовка  на стъклата  
41. Аликвоти  от инокулираната  среда  се наливат  в стъкла  с повторения , 
така че да се постигне  съотношение  между  свободното  пространство  и 
течността , равно  на 1:2 (напр . в съд с вместимост  160 ml се наливат  
107 ml). Може  да се използват  и други  стойности  на съотношението , но 
трябва  да се има предвид  предупреждението  от точка  11. Какъвто  и да 
е видът  на използвания  инокулум , трябва  да се внимава  инокулираната  
среда  да е добре  размесена , така че да бъде  равномерно  разпределена  
по изпитвателните  стъкла . 
42. Приготвят  се набори  от стъкла  (точка  15, а), които  съдържат  следното : 
а) съдове  за изпитване  (означени  като F T ), съдържащи  изпитвания  
химикал ; 
б) контролни  съдове  без химикал  (означени  като F B ), съдържащи  само  
среда  за изпитване  и инокулум ; добавят  се химикали , разтворители , 
агенти  или филтри  от стъклена  вата, използвани  за въвеждане  на 
изпитвания  химикал  в съдовете  за изпитване ; 
в) съдове  (означени  като F C ) за проверка  на процедурата , съдържащи  
референтния  химикал ; 
г) ако е необходимо , съдове  (означени  като F I ) за проверка  на 
възможно  инхибиращо  въздействие  на изпитвания  химикал , 
съдържащи  изпитвания  химикал  и референтен  химикал  със същите  
концентрации  (точка  24) като съответно  в съдовете  F T и F C ; 
д) съдове  (означени  като F S ) за проверка  на възможно  абиотично  
разграждане , съдържащи  същото  както  в а) плюс  50 mg/l HgCl  2 
или стерилизирани  по друг  начин  (напр . чрез автоклавиране ). 
43. Разтворимите  във вода  изпитвани  химикали  и референтните  химикали  
се добавят  като водни  изходни  разтвори  (точки  22, 23 и 24), за да се 
постигне  концентрация  от 10 до 20 mg С/l. 
44. Неразтворимите  изпитвани  химикали  и неразтворимите  референтни  
химикали  се добавят  в стъклата  по различни  начини  (вж. точка  22 
а)—д) в зависимост  от естеството  на изпитвания  химикал  преди  или 
след  добавянето  на инокулираната  среда , според  метода  за третиране  
на изпитвания  химикал . Ако се използва  една  от процедурите , 
посочени  в точка  22, а)—д), контролните  стъкла  без химикал  F B 
(точка  42, б) се третират  по сходен  начин , но без да се добавя  
изпитваният  химикал  или референтният  химикал . 
45. Летливите  изпитвани  химикали  следва  да се инжектират  в запечатаните  
стъкла  (точка  47), като се използва  микроспринцовка . Дозата  се 
изчислява , като се вземат  инжектираният  обем  и плътността  на 
изпитвания  химикал . 
46. Когато  е необходимо , в съдовете  се добавя  вода , за да може  във всеки  
съд да има еднакво  количество  течност . Трябва  да се гарантира , че 
съотношението  между  свободното  пространство  и течността  (обик­  
новено  1:2) и концентрацията  на изпитвания  химикал  са такива , че в 
свободното  пространство  има достатъчно  кислород  за осъществяване  
на пълно  биоразграждане . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1427
 
47. Всички  стъкла  след  това се запечатват  херметично , напр . със 
запушалки  от бутилов  каучук  и алуминиеви  капачки . Летливите  
изпитвани  химикали  се добавят  именно  на този етап (точка  45). Ако 
трябва  да се следи  намаляването  на концентрацията  на DOC на изпитв­  
ателния  разтвор  и да се измери  в момент  нула  началната  концентрация  
на IC (стерилни  контролни  съдове , точка  42, д), от съда  за изпитване  се 
взема  съответната  проба . След  това съдът  и съдържанието  му се 
отстраняват . 
48. Запечатаните  стъкла  се поставят  на въртяща  се клатачна  машина  (точка  
15, г), със скорост  на клатене , която  е достатъчна  да поддържа  
съдържанието  на стъклата  добре  смесено  и в суспензия  (напр . 
150—200 об/min), и се инкубират  на тъмно  при температура  20 °С 
± 1 °С. 
Вземане  на проби  
49. Схемата  на вземане  на проби  зависи  от латентния  период  и скоростта  
на биоразграждане  на изпитвания  химикал . В деня  на вземане  на проби  
се изваждат  стъкла  за анализ , като това се извършва  най-малко  веднъж  
седмично  или по-често  (напр . два пъти  седмично ), ако се цели  
съставяне  на пълна  крива  на биоразграждане . Изискваният  брой  
стъкла  с повторения  от групите  F T , F B и F C и, ако са използвани , F I 
и F S , се взема  от клатачната  машина  (вж. точка  42). Изпитването  обик­  
новено  трае 28 дни. Ако кривата  на биоразграждане  показва , че е дост­  
игната  фаза  на плато  преди  28-ия ден, изпитването  можа  да се прекрати  
по-рано  от 28-ия ден. Вземат  се проби  за анализ  от пет стъкла , 
предвидени  за 28-ия ден на изпитването , и се използват  резултатите  
за изчисляване  на доверителните  граници  или на коефициента  на 
вариация  на процента  на биоразграждане . От стъклата , които  са 
предназначени  за проверка  на инхибиращото  въздействие  и абиот­  
ичното  разграждане , не е необходимо  толкова  често  пробовземане , 
колкото  от останалите ; би било  достатъчно  да се вземат  проби  от 
първия  и от 28-я ден. 
Анализ  на неорганичния  въглерод  (IC)  
50. Отделянето  на CO  2 в стъклата  се определя  чрез измерване  на конце­  
нтрацията  на неорганичен  въглерод  (IC) по време  на инкубацията . 
Съществуват  два препоръчани  метода , описани  по-долу , за измерване  
на количеството  на IC, получен  при изпитването . Тъй като методите  
могат  да дадат  леко  различаващи  се резултати , само  един  от тях може  
да се използва  в изпитването . 
51. Метод  (а) се препоръчва , ако е вероятно  средата  да съдържа  остатъци  
напр . от филтър  от стъклени  нишки  и/или неразтворим  изпитван  
химикал . Този  анализ  може  да се извърши  с използване  на газов  хром­  
атаграф , ако не е наличен  анализатор  на въглерод . Важно  е когато  се 
анализира  газът  от свободното  пространство , стъклата  да бъдат  с 
температурата , която  са имали  при изпитването , или близка  до нея. 
Метод  (б) може  да е по-лесен  за прилагане  в лаборатории , използващи  
анализатори  на въглерод  за измерване  на IC. Важно  е разтворът  на 
натриев  хидроксид  (точка  21), който  се използва  за преобразуване  на 
CO 2 в карбонат , да бъде  прясно  приготвен , или съдържанието  на IC в 
него  да бъде  известно , така че то да се вземе  предвид  при изчисляване  
на резултатите  от изпитването  (вж. точка  66, б). 
Метод  (а): Ацидификация  до рН < 3  
52. Преди  всяка  група  анализи , анализаторът  на IC се калибрира  с 
подходящ  стандарт  за IC (напр . 1 % т/т CO  2 в N 2 ). През  запушалката  
във всяко  стъкло  се инжектира  концентрирана  ортофосфорна  киселина  
(вж. точка  20), за да се намали  рН на средата  до < 3 (напр . добавя  се 1 
ml на 107 ml изпитвателна  среда ). Стъклата  се поставят  отново  на 
клатачната  машина . След  разклащане  в продължение  на един  час при 
температурата  на изпитването  стъклата  се свалят  от клатачната  
машина , от свободното  пространство  се изтеглят  аликвоти  газ (напр . 
1 ml) и се инжектират  в анализатора  на IC. Измерените  концентрации  
на IC се записват  като mg С/l. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1428
 
53. Методът  се основава  на принципа , че след  ацидификация  до рН < 3 и 
уравновесяване  при 20 °С, равновесната  константа  на разпределението  
на CO  2 между  течната  и газообразната  фаза  в изпитвателните  стъкла  
става  равна  на 1,0, когато  се измерва  като концентрация  (13). Тази  
зависимост  следва  да се докаже  поне  веднъж  за изпитвателната  
система  както  следва : 
Приготвят  се стъкла , съдържащи  5 и 10 mg/l IC, като се използва  
разтвор  от безводен  натриев  карбонат  (Na  2 CO 3 ) в несъдържаща  CO  2 
вода , приготвена  чрез ацидификация  на вода  до рН 6,5 с конце­  
нтрирана  ортофосфорна  киселина  (точка  20), барботирана  една  нощ с 
несъдържащ  CO  2 въздух  и повишаване  на рН до неутрална  реакция  с 
основа . Трябва  да се гарантира , че съотношението  между  свободното  
пространство  и течността  е същото  като в изпитванията  (напр . 1:2). 
Извършва  се ацидификация  и уравновесяване , както  е описано  в 
точка  52, и се измерват  концентрациите  на IC в свободното  
пространство  и в течната  фаза . Проверява  се дали  двете  концентрации  
са еднакви  в пределите  на експерименталната  грешка . Ако не са, 
анализаторът  следва  да преразгледа  процедурите  на изпитването . Не е 
необходимо  проверката  на разпределението  на IC между  течната  и 
газовата  фаза  да се извършва  при всяко  изпълняване  на изпитването ; 
тя може  да се направи  при калибрирането . 
54. Ако трябва  да се измерва  елиминирането  на DOC (само  при разт­  
ворими  във вода  изпитвани  химикали ), следва  да се вземат  проби  от 
течната  фаза  от отделни  стъкла  (в които  не е извършвана  ацидифик­  
ация ), които  се филтруват  през мембранен  филтър  и инжектират  в 
анализатор  на DOC. Същите  стъкла  могат  да се използват  и за други  
анализи , както  е необходимо , за анализиране  на първичното  
биоразграждане . 
Метод  (б): превръщане  на CO  2 в карбонат  
55. Преди  всяка  група  анализи , анализаторът  на IC се калибрира  с 
подходящ  стандарт  за IC – например  разтвор  на натриев  бикарбонат  
(NaHCO  3 ) във вода , несъдържаща  CO  2 (вж. точка  53), в обхвата  0—20 
mg IC/l. През  запушалката  във всяко  стъкло  се инжектира  разтвор  на 
натриев  хидроксид  (7М, точка  21) (напр . 1 ml на 107 ml среда ) и 
стъклата  се разклащат  в продължение  на 1 час при температурата  на 
изпитването . Трябва  да се използва  един  и същи  разтвор  на NaOH във 
всички  стъкла , които  се изваждат  от изпитването  в един  ден, но не 
непременно  във всички  пробовземания  в процеса  на изпитването . 
Ако се изискват  абсолютните  стойности  на IC за контролните  стъкла  
без изпитвания  химикал  при всички  проби  в изпитването , определянето  
на IC в разтвора  на NaOH трябва  да се прави  всеки  път, когато  той се 
използва . Стъклата  се свалят  от клатачната  машина  и се изчаква  
утаяването . Със спринцовка  от всеки  съд се изтеглят  подходящи  
количества  (напр . 50—1 000 μl) от течната  фаза . Пробите  се 
инжектират  в анализатора  на IC и се записват  концентрациите  на IC. 
Трябва  да се гарантира , че използваният  анализатор  е оборудван  за 
работа  с основните  проби , използвани  в метода . 
56. Методът  се основава  на принципа , че след  добавянето  на основа  и 
разклащане , концентрацията  на IC в свободното  пространство  е 
пренебрежимо  малка . Това  трябва  да се провери  за изпитвателната  
система  поне  веднъж , като се използват  стандарти  на IC, добави  се 
основа  и се извърши  уравновесяване , измери  се концентрацията  на 
IC в свободното  пространство  и в течната  фаза  (вж. точка  53). Конце­  
нтрацията  в свободното  пространство  трябва  да клони  към нула . Не е 
необходимо  при всяко  изпълняване  на изпитването  да се извършва  
проверка  на почти  пълната  абсорбция  на CO  2 . 
57. Ако трябва  да се измерва  елиминирането  на DOC (само  при разт­  
ворими  във вода  изпитвани  химикали ), следва  да се вземат  проби  от 
течната  фаза  от отделни  стъкла  (в които  не е добавяна  основа ), които  
се филтруват  през мембранен  филтър  и се инжектират  в анализатор  на 
DOC. Същите  стъкла  могат  да се използват  и за други  анализи , както  е 
необходимо , за анализиране  на първичната  биоразградимост . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1429
 
ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Изчисляване  на резултатите  
58. Ако се предположи , че изпитваният  химикал  е минерализиран  100 % 
до CO  2 , ThIC, който  е в повече  спрямо  получения  в контролните  
съдове  без добавен  изпитван  химикал , е равен  на общия  органичен  
въглерод  (TOC), добавен  във всяко  стъкло  в началото  на изпитването , 
т.е.: 
ThIC ¼ TOC : 
Масата  (mg) на общия  неорганичен  въглерод  (TIC) във всяко  стъкло  е: 
TIC ¼ ðmg С в течността þ mg С в свободното  пространствоÞ 
¼ ðV L Ü C L Þ þ ðV H Ü C H Þ Уравнение  [1] 
където : 
V L = обем  на течността  в стъклото  (литри ); 
C L = концентрация  на IC в течността  (като въглерод  в mg/l);  
V H = обем  на свободното  пространство  (литри ); 
C H = концентрация  на IC в свободното  пространство (като въглерод  в 
mg/l).  
Изчисляването  на TIC за двата  аналитични  метода , използвани  за 
измерване  на неорганичния  въглерод  в настоящото  изпитване , е 
описано  в по-долу  в точки  60 и 61. Процентът  на биоразграждане  
(% D ) в единия  и в другия  случай  се дава с формулата : 
%D ¼ ðTIC  t Ä TIC  b Þ 
TOC Ü 100 Уравнение  [2] 
където : 
TIC  t = mg TIC в стъклото  за изпитване  в момент  t; 
TIC  b = средно  mg TIC в контролните  стъкла  в момент  t; 
TOC = mg TOC добавен  в началото  в изпитвателния  съд. 
Процентът  на биоразграждане  % D се изчислява  за изпитвателните  
(F T ), референтните  (F  C ) и, ако са включени , контролните  стъкла  за 
наблюдение  на инхибирането  (F  I ), като се вземат  за изходни  данни  
съответните  количества  общ неорганичен  въглерод , получени  към 
всеки  момент  на вземане  на проби . 
59. Ако има значително  увеличаване  на съдържанието  на общ неорганичен  
въглерод  на стерилните  (F S ) контроли  през периода  на изпитването , 
може  да се направи  заключението , че е настъпило  абиотично  
разграждане  на изпитвания  химикал , което  следва  да се вземе  
предвид  при изчисляването  на D в уравнение  [2]. 
Ацидификация  до рН < 3  
60. Тъй като ацидификацията  до рН < 3 и уравновесяването  водят  до 
изравняване  на концентрацията  на общия  неорганичен  въглерод  в 
течната  и в газовата  фаза , трябва  да се измерва  само  концентрацията  
на неорганичния  въглерод  в газовата  фаза . Поради  това, от уравнение  
[1] TIC ¼ ðV L þ V H Þ Ü C H ¼ V B Ü C H , където  V B = обем  на стъклото  за 
серум . 
Превръщане  на CO  2 в карбонат  
61. При този метод  изчисленията  се извършват  както  в уравнение  [1], но се 
игнорира  пренебрежимо  малкото  количество  неорганичен  въглерод  в 
газовата  фаза , така че V H Ü C H ¼ 0, и TIC ¼ V L Ü C L . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1430
 
Изразяване  на резултатите  
62. Построява  се кривата  на биоразграждането , като се нанася  стойността  
на процента  на биоразграждане  D в зависимост  от времето  на 
инкубация , като се посочват , ако е възможно , латентната  фаза , фазата  
на биоразграждане , 10-дневния  период  и фазата  на плато , т.е. фазата , 
при която  биоразграждането  е максимално  и в която  биоразграждането  
се задържа  на едно  ниво . Ако са получени  съпоставими  резултати  за 
съдовете  F T от успоредното  изпитване  (< 20 % разлика ), начертава  се 
средната  крива  (вж. допълнение  2, фигура  1); ако не, начертава  се 
крива  за всеки  съд. Определя  се средната  стойност  на процента  на 
биоразграждане  във фазата  на плато , или се оценява  най-високата  
стойност  (напр . когато  кривата  тръгва  надолу  във фазата  на плато ), 
но е важно  да се прецени  дали  в този случай  стойността  не е извън  
серията . Това  най-високо  ниво  на биоразграждане  се посочва  като 
„степен  на биоразграждане  на изпитвания  химикал “ в доклада  от 
изпитването . Ако броят  на съдовете  в изпитването  не е достатъчен  да 
се получи  фаза  на плато , данните , измерени  в последния  ден на 
изпитването  се използват , за да се изчисли  средна  стойност . 
Последната  стойност , средно  от пет повторения , се използва  за 
посочване  на точността  на определяне  на процента  на биоразграждане . 
В отчета  се включва  и стойността , получена  в края  на 10-дневния  
период . 
63. По същия  начин  се построява  и крива  за референтния  химикал  F C , и, 
ако са включени  F S и F I — съответно  проверка  за абиотичното  
разграждане  и контрола  за инхибиране , построяват  се криви  и за тях. 
64. Количествата  на общия  неорганичен  въглерод  в контролните  съдове  
без химикал  (F B ) се записват , както  и онези  в съдовете  F S (проверка  
за абиотично  разграждане ), ако тези съдове  са включени  в изпитването . 
65. Изчислява  се D за съдовете  F I въз основа  на теоретичния  добив  на 
неорганичен  въглерод , който  се очаква  само  от референтния  химикал  
в сместа . Ако на 28-ия ден [(D  FC ( 1 ) – D  FI ( 2 ))/D  FC ] × 100 > 25 %, може  
да се предположи , че изпитваният  химикал  е довел  до инхибиране  на 
действието  на инокулума , и че ниските  стойности  на D FT , получени  
при условията  на провеждане  на изпитването , се дължат  на това. В 
този случай  изпитването  може  да се повтори , като се използва  по- 
ниска  изпитвателна  концентрация  и като се намали , за предпочитане , 
наличието  на разтворен  неорганичен  въглерод  в инокулума  и на общия  
неорганичен  въглерод  в контролните  съдове , тъй като иначе  по-ниската  
концентрация  на изпитвания  химикал  ще намали  точността  на метода . 
Като  друга  възможност  може  да се използва  и друг  инокулум . Ако в 
съд F S (абиотично  разграждане ) се наблюдава  значително  (> 10 %) 
повишаване  на количеството  на общия  неорганичен  въглерод , може  
да е протекъл  процес  на абиотично  разграждане . 
Валидност  на резултатите  
66. Изпитването  се смята  за валидно , ако: 
а) средният  процент  на разграждане  в съдовете  F C , съдържащи  
референтния  химикал , е > 60 % към 14-ия ден на инкубацията ; и 
б) средното  количество  на общия  неорганичен  въглерод  в контролните  
съдове  F B в края  на изпитването  е > 3 mg С/l. 
Ако тези граници  не са спазени , изпитването  трябва  да се повтори  с 
инокулум  от друг  източник  и/или трябва  да се преразгледат  
използваните  процедури . Например , ако проблемът  се състои  във 
високия  добив  на неорганичен  въглерод  в контролните  съдове , трябва  
да се следва  процедурата , посочена  в точки  27—32.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1431  
( 1 ) Процент  на биоразграждане  в съдовете  F C , съдържащи  референтното  вещество . 
( 2 ) Процентът  на разграждане  в съдове  F I .
 67. Ако изпитваният  химикал  не осигурява  60 % от максималната  
теоретична  продукция  на неорганичен  въглерод  и е доказано , че не 
оказва  инхибиращо  въздействие  (вж. точка  65), изпитването  може  да 
се повтори  с по-висока  концентрация  на инокулум  (до 30 mg/l активна  
утайка  и 100 ml изходящи  води /l) или с инокулум  от други  източници , 
особено  ако разграждането  е било  в интервала  20—60 %.  
Интерпретиране  на резултатите  
68. В настоящото  изпитване  биоразграждане  > 60 % от максималната  
теоретична  продукция  на неорганичен  въглерод  в рамките  на 10- 
дневния  период  показва , че изпитваният  химикал  е лесно  биоразградим  
при аеробни  условия . 
69. Ако не е достигнат  прагът  от 60 % максималната  теоретична  
продукция  на неорганичен  въглерод , трябва  да се определи  стойността  
на рН на средата  в стъклата , в които  не е добавяна  киселина  или 
основа ; стойност , по-ниска  от 6,5, е указание  за възможна  нитриф­  
икация . В такъв  случай  изпитването  се повтаря  с буферен  разтвор  с 
по-висока  концентрация . 
Доклад  от изпитването  
70. Съставя  се таблица  за % на D за всяко  изпитвателно  (F T ), референтно  
(F C ) и, ако е включено , контролно  стъкло  за наблюдение  на 
инхибирането  (F  I ), за всеки  ден, в който  са вземани  проби . Ако за 
стъклата  с повторенията  са получени  съпоставими  резултати , 
начертава  се крива  на средния  % D в зависимост  от времето . Записва  
се количеството  на общия  неорганичен  въглерод  в контролните  съдове  
(F B ) и в стерилните  контролни  съдове  (F  S ), както  и на разтворения  
органичен  въглерод  и/или други  параметри , както  и процентът  на 
елиминирането  им. 
71. Определя  се средната  стойност  на % D във фазата  на плато , или се 
използва  най-високата  стойност , ако кривата  на биоразграждането  
тръгва  надолу  във фазата  на плато , и тази стойност  се отчита  като 
„степен  на биоразграждане  на изпитвания  химикал “. Важно  да се 
гарантира , че в последния  случай  най-високата  стойност  не е извън  
кривата . 
72. Докладът  от изпитването  трябва  да съдържа  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— общоприето  наименование , химично  наименование , номер  по CAS, 
структурна  формула  и съответни  физични  и химични  свойства , 
— чистота  (примеси ) на изпитвания  химикал . 
Условия , при които  се извършва  изпитването : 
— позоваване  на настоящия  метод  за изпитване , 
— описание  на системата  за извършване  на изпитването  (т.е., обем  на 
съда  за изпитването , съотношение  между  свободното  пространство  
и течността , метод  на разклащане  и т.н.), 
— прилагане  на изпитвания  и референтния  химикал  в системата  за 
изпитване : използвана  концентрация  на изпитване  и количество  на 
дозирания  във всяко  опитно  стъкло  въглерод , използване  на разт­  
ворители , 
— данни  за използвания  инокулум , за възможно  предварително  
третиране  и предварителна  подготовка , 
— температура  на инкубиране , 
— валидиране  на принципа  на анализа  на неорганичен  въглерод , 
— основни  характеристики  на използвания  уред  за анализиране  на 
неорганичен  въглерод  (както  и на всякакви  други  използвани  
методи  за анализ ), 
— брой  на повторенията . 
Резултати : 
— необработени  данни  и изчислени  стойности  на биоразградимостта  
под формата  на таблица , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1432
 
— графика  на процента  на разграждане  в зависимост  от времето  за 
изпитвания  и референтния  химикал , латентната  фаза , фазата  на 
разграждане , 10-дневния  период  и наклона  на кривата , 
— процентът  на елиминиране  във фазата  на плато , в края  на 
изпитването  и след  10-дневния  период , 
— причини  за отхвърляне  на резултатите  от изпитването , 
— други  факти , които  са важни  по отношение  на следваните  
процедури , 
— обсъждане  на резултатите . 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) Глава  В.4 от настоящото  приложение , Определяне  на пряката  
биологична  разградимост  — Метод  за отделяне  на СО 2 (метод  В.4-В). 
(2) Sturm RN (1973). Biodegradability of Nonionic surfactants: screening test 
for predicting rate and ultimate biodegradation. J.A,.Oil Chem Soc. 50: 
159-167.  
(3) Larson RJ (1979). Estimation of biodegradation potential of xenobiotic 
organic chemicals. Appl Env. Microbiol. 38: 1153-1161.  
(4) Larson RJ, Hansmann MA and Bookland EA (1996). Carbon dioxide 
recovery in ready biodegradability tests: mass transfer and kinetic constants, Chemosphere 33: 1195-1210.
 
(5) ISO 9439 (1990; revised 1999). Water Quality - Evaluation of ultimate 
aerobic biodegradability of organic compounds in aqueous medium - Carbon dioxide evolution Test (Sturm).
 
(6) US EPA (1996). Fate, Transport and Transformation Test Guideline. 835. 
3110 Carbon dioxide evolution test. Office, Prevention Pesticides and 
Toxic Substances Washington, DC.  
(7) US EPA (1996). Fate, Transport and Transformation Test Guideline. 835. 
3100. Aerobic aquatic biodegradation. Office, Prevention Pesticides and Toxic Substances Washington, DC.
 
(8) Gledhill WE (1975). Screening test for assessment of biodegradability: 
Linear alkyl benzene sulfonate. Appl Microbiol. 30: 922-929.  
(9) Weytjens D, Van Ginneken I and Painter HA (1994). The recovery of 
carbon dioxide in the Sturm test for ready biodegradability. Chemosphere 28: 801-812.
 
(10) Ennis DM and Kramer A (1975). A rapid microtechnique for testing 
biodegradability of nylons and polyamides. J. Food Sci. 40: 181-185.  
(11) Ennis DM, Kramer A, Jameson CW, Mazzoccki PH and Bailey PH (1978). 
Appl. Env. Microbiol. 35: 51-53.  
(12) Boatman RJ, Cunningham SL and Ziegler DA (1986). A method for 
measuring the biodegradation of organic chemicals, Env. Toxicol. Chem. 
5: 233-243.  
(13) Struijs J and Stoltenkamp J (1990). Head space determination of evolved 
carbon dioxide in a biodegradability screening test. Ecotox. Env. Safety 19: 204-211.
 
(14) Birch RR and Fletcher RJ (1991). The application of dissolved inorganic 
carbon measurements to the study of aerobic biodegradability. 
Chemosphere 23: 507-524.  
(15) Birch RR, Biver C, Campagna R, Gledhill WE, Pagga U, Steber J, Reust 
H, and Bontinck WJ (1989). Screening of chemicals for anaerobic biodeg ­
radation. Chemosphere 19: 1527-1550.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1433
 
(16) ISO 14593, (1999) Water Quality - Evaluation of ultimate aerobic biodeg ­
radability of organic compounds in an aerobic medium-method by analysis 
of inorganic carbon in sealed vessels (C0  2 headspace test).  
(17) Battersby NS (1997). The ISO headspace C0  2 biodegradation test, 
Chemosphere 34: 1813-1822.  
(18) US EPA (1996). Fate, Transport and Transportation. 835.3120. Sealed 
vessel carbon dioxide production test. Office, Prevention Pesticides and 
Toxic Substance, Washington, DC.  
(19) Battersby NS, Ciccognani D, Evans MR, King D, Painter HA, Peterson DR 
and Starkey M (1999). An „inherent“ biodegradability test for oil products: description and results of an international ring test. Chemosphere 38: 3219- 
3235.
 
(20) Глава  В.4 от настоящото  приложение , Определяне  на пряката  
биологична  разградимост  
(21) OECD (1988). OECD Ring-test of methods for determining ready biodeg ­
radability: Chairman’s report (M. Hashimoto; MITI) and final report 
(M. Kitano and M. Takatsuki; CITI). Paris.  
(22) Глава  В.11 от настоящото  приложение , Изпитване  за потискане  
дишането  на активирана  утайка . 
(23) Struijs J, Stoltenkamp-Wouterse MJ and Dekkers ALM (1995). A rationale 
for the appropriate amount of inoculum in ready biodegradability tests. Biodegradation 6: 319-327.
 
(24) EU (1999). Ring-test of the ISO Headspace CO  2 method: application to 
surfactants: Surfactant Ring Test-1, Report EU4697, Water Research Centre, May 1999, Medmenham, SL7 2HD, UK.
 
(25) ISO 10634 (1996) Water Quality - Guidance for the preparation and 
treatment of poorly water-soluble organic compounds for the subsequent 
evaluation of their biodegradability in an aqueous medium.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1434
 
Допълнение  1 
СЪКРАЩЕНИЯ  И ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
IC: Неорганичен  въглерод  
ThCO  2 : Теоретичен  въглероден  диоксид  (mg) е изчисленото  количество  
въглероден  диоксид , което  ще се получи  от известно  или измерено  
съдържание  на въглерод  в изпитвания  химикал , когато  той бъде  напълно  
минерализиран ; изразява  се също  като mg въглероден  диоксид , отделян  от 1 
mg от изпитвания  химикал . 
DOC:  Разтворен  органичен  въглерод  е органичният  въглерод , присъстващ  в 
разтвора , или който  преминава  през филтър  от 0,45 микрометра , или остава  
в супернатанта  след  центрофугиране  при около  4 000 g ( около  40 000 m.s  -2 ) 
за 15 min.  
DIC:  Разтворен  неорганичен  въглерод  
ThIC:  Теоретично  съдържание  на неорганичен  въглерод  
TIC:  Общ  неорганичен  въглерод  
Лесно  биоразградим : Условна  класификация  на химикалите , които  са 
преминали  през определени  пресяващи  изпитвания  за пълна  
биоразградимост ; тези изпитвания  са толкова  строги , че се счита , че 
такива  съединения  бързо  и напълно  се разграждат  биологично  във водна  
среда  при аеробни  условия . 
10-дневен  период : 10-те дни, които  непосредствено  следват  достигането  на 
10 % биоразграждане . 
Присъща  биоразградимост : Класификация  на химикали , за които  има 
неоспорими  доказателства  за биологично  разграждане  (първично  или 
пълно ) в което  и да е изпитване  за биоразградимост . 
Пълно  аеробно  биоразграждане : Равнището  на постигнато  разграждане , 
когато  изпитваният  химикал  е напълно  усвоен  от микроорганизмите  и в 
резултат  на това са произведени  въглероден  диоксид , вода , минерални  
соли  и нови  микробни  клетъчни  съставки  (биомаса ). 
Минерализация : Минерализация  е пълното  разграждане  на органичен  
химикал  до СО 2 и Н 2 О при аеробни  условия , и до СН 4 , СО 2 и Н 2 О при 
анаеробни  условия . 
Латентна  фаза : Периодът  от началото  на изпитването  до момента  на 
достигане  на аклиматизиране  и/или адаптация  на разлагащите  микроорга­  
низми , и на осезаемо  увеличаване  на степента  на биоразграждане  на даден  
изпитван  химикал  или органична  материя  (напр . 10 % от максималното  
теоретично  биоразграждане  или по-нисък  процент , в зависимост  от 
точността  на начина  на измерване ). 
Фаза  на разграждане : Времето  от края  на латентната  фаза  до времето , при 
което  са достигнати  90 % от максималното  равнище  на разграждане . 
Фаза  на плато : Фазата  на плато  е фазата , в която  е достигнато  максимално  
разграждане  и кривата  на биоразграждане  е изравнена . 
Изпитван  химикал : Всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1435
 
Допълнение  2 
Пример  на крива  на биоразграждане  
Фигура  1 
Биоразграждане  на 1-октанол  в изпитване  за CO  2 в свободно  
пространство
  
Терминологичен  справочник  
Биоразграждане : 
Фаза  на разграждане : 
Максимална  степен  на биоразграждане : 
Фаза  на плато : 
10-дневен  период : 
Време  на изпитването  (дни) ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1436
 
В.30. БИОАКУМУЛАЦИЯ  В СУХОЗЕМНИ  ОЛИГОХЕТИ  
УВОД  
1. Настоящият  метод  е еквивалентен  на Насоките  за изпитване  (НИ) на 
ОИСР  317 (2010). Сред  методите  за изпитване  във връзка  със съдбата  в 
околната  среда , съответно  през 1996 г. и 2008 г. бяха  публикувани  
методите  Биоконцентрация : проточен  тест върху  риби  (глава  В.13 от 
настоящото  приложение  (49) и „Биоакумулация  в седиментните  
бентосни  олигохети “ (53). Екстраполацията  на данни  за биоакумул­  
ацията  във водна  среда  към сухоземни  организми , напр . червеи , е 
трудна , ако изобщо  е възможна . Изчисленията  с помощта  на модел , 
основан  на липофилността  на даден  изпитван  химикал , напр . (14) 
(37), понастоящем  се използват  за оценка  на биоакумулацията  на 
химикалите  в почвата , като напр . в Техническото  Ръководство  на ЕС 
(19). Необходимостта  от метод  за изпитване , специфичен  за средата , 
вече е била  обект  на проучване , напр . (55). Подобен  метод  е особено  
важен  за оценката  на вторичното  отравяне  в сухоземните  хранителни  
вериги  (4). В редица  национални  методи  за изпитване , напр . в (2) и 
(72), се разглежда  въпросът  за биоакумулацията  в различни  от риба  
организми . Метод  за измерване  на биоакумулацията  от замърсени  
почви  в земни  червеи  (Eisenia fetida , Savigny) и енхитреиди  е 
разработен  от Американската  асоциация  за изпитвания  и 
материали  (ASTM) (3). Международно  приет  метод  за определяне  на 
биоакумулацията  в почви  с добавено  вещество  ще подобри  оценката  на 
риска  от химикали  в сухоземните  екосистеми , напр . (25) (29).  
2. Хранещите  се с почва  безгръбначни  са изложени  на химикали , налични  
в почвата . Сред  тези животни , сухоземните  олигохети  играят  важна  
роля  за структурата  и функционирането  на почвите  (15) (20). Сухоз­  
емните  олигохети  живеят  в почвата  и частично  на повърхността  ѝ (по- 
специално  в торния  слой ); често  те са най-разпространените  видове , 
изразено  като биомаса  (54). Чрез  смесване  на съставките  на почвата  
(биотурбация ) и като служат  за плячка  на други  животни , олигохетите  
могат  да окажат  силно  влияние  върху  бионаличността  на химикалите  за 
други  организми , като безгръбначни  (напр . хищни  паякообразни  и 
бръмбари ; напр . (64) или гръбначни  (напр . лисици  и чайки ) хищници  
(18) (62). Някои  видове  сухоземни  олигохети , които  понастоящем  се 
използват  в екотоксикологичните  изпитвания , са описани  в 
допълнение  5. 
3. В Ръководството  на ASTM за извършване  на лабораторни  изпитвания  
за определяне  на токсичността  на почвата  или биоакумулацията  в 
земни  червеи  Eisenia fetida  и енхитреиди  Enchytraeus albidus  (3) се 
съдържат  множество  важни  и полезни  данни  за прилагането  на 
изложения  тук метод  за изпитване  на биоакумулацията  в почвата . 
Други  документи , които  се споменават  в настоящия  метод  за 
изпитване , са глава  В.13 от настоящото  приложение , озаглавена  „Био­  
концентрация : проточен  тест за риби “ (49), и Насоки  на ОИСР  TG 315: 
„Биоакумулация  в седиментните  бентосни  олигохети “ (53). Практ­  
ическият  опит  по отношение  на биоакумулацията  в почвата  и публик­  
ациите  в научните  издания , напр . (1) (5) (11) (12) (28) (40) (43) (45) (57) 
(59) (76) (78) (79), също  са значим  източник  на информация  за 
настоящия  метод  за изпитване . 
4. Настоящият  метод  за изпитване  е приложим  главно  по отношение  на 
стабилни , неутрални  органични  химикали , които  имат  склонност  за 
адсорбция  в почвата . С настоящия  метод  за изпитване  е възможно  да 
се извършват  изпитвания  за биоакумулация  на свързващи  се с почвата  
стабилни  органометални  съединения . Той е приложим  и към метали  и 
други  микроелементи . 
НЕОБХОДИМИ  УСЛОВИЯ  
5. Изпитвания  за измерване  на биоакумулацията  на химикали  в сухоземни  
олигохети  са били  извършвани  с тежки  метали  (вж. напр . (63) и 
устойчиви  органични  химикали  със стойности  на log Kow между  3,0 
и 6,0 (40). Подобни  изпитвания  са приложими  и към: 
— химикали , при които  log K  ow е по-голямо  от 6,0 (силно  хидрофобни  
химикали ), ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1437
 
— химикали , принадлежащи  към клас органични  химикали , за който  е 
известно , че има потенциал  за натрупване  в живи  организми , напр ., 
повърхностноактивни  или силно  адсорбиращи  се химикали , 
— химикали , в чиято  структура  има указания  за потенциал  за биоак­  
умулация , т.е., аналози  на химикали  с известен  потенциал  за биоак­  
умулация , и 
— метали . 
6. Преди  започването  на изследването  следва  да се събере  информация  за 
изпитвания  химикал , напр . общоприето  наименование , химично  наиме­  
нование  (за предпочитане  по IUPAC) структурна  формула , номер  по 
CAS, чистота , мерки  за безопасност , правилни  условия  за съхранение  и 
методи  за анализ . Освен  това следва  да е известна  и следната  
информация : 
а) разтворимост  във вода ; 
б) коефициент  на разпределение  октанол -вода , K ow ; 
в) коефициент  на разпределение  почва -вода , изразен  като K oc ; 
г) парно  налягане ; 
д) разградимост  (напр . в почва  или вода ); 
е) известни  метаболити . 
7. Могат  да се използват  белязани  или небелязани  с радиоактивен  изотоп  
изпитвани  химикали . Въпреки  това, за да се улесни  анализът , 
препоръчва  се да се използва  белязан  изпитван  химикал . Решението  
за това се взема  в зависимост  от границите  на откриване  или на необ­  
ходимостта  да се измерват  изходният  изпитван  химикал  и метаболитите  
му. Ако се използва  белязан  с радиоактивен  изотоп  химикал  и се 
измерват  общите  радиоактивни  остатъци , важно  е белязаните  
остатъци  в почвата  и в опитните  организми  да се характеризират  по 
отношение  на процента  съответно  на изходния  изпитван  химикал  и на 
белязания  неизходен  химикал , т.е., в пробите , взети  при стационарно  
състояние  или в края  на фазата  на поглъщане , за да може  да се 
пресметне  коефициентът  на биоакумулация  (BAF) за изходния  
изпитван  химикал  и за значимите  почвени  метаболити  (вж. точка  50). 
Може  да се наложи  описаният  тук метод  да бъде  изменен , напр . с оглед  
на получаването  на достатъчно  количество  биомаса  за измерване  на 
небелязани  с радиоактивен  изотоп  органични  изпитвани  химикали  
или метали . Ако се измерват  общите  радиоактивни  остатъци  (чрез 
течно  сцинтилационно  броене  след  извличане , изгаряне  или разтваряне  
на тъкани ), то BAF се базира  на изходния  изпитван  химикал  и мета­  
болитите  му. Изчисляването  на BAF за предпочитане  се прави  въз 
основа  на концентрацията  на изходния  изпитван  химикал  в орга­  
низмите  и на общите  радиоактивни  остатъци . След  това се изчислява  
коефициентът  на биоакумулация  биота -почва  (BSAF), нормализиран  по 
отношение  на съдържанието  на липиди  на червеите  и на съдържанието  
на органичен  въглерод  (OC) в почвата , като се взема  за основа  BAF, за 
да се осигури  съпоставимост  между  резултатите  от различни  
изпитвания  за биоакумулация . 
8. Токсичността  на изпитвания  химикал  спрямо  използваните  в 
изпитването  видове  следва  да бъде  известна , например  ефективна  
концентрация  (ECx) или леталната  концентрация  (LCx) за времето  на 
фазата  на поглъщане  (напр . (19). Избраната  концентрация  на 
изпитвания  химикал  следва  да бъде  около  1 % от острата  асимптотична  
LC 50 и поне  10 пъти  по-висока  от границата  на откриване  на 
изпитвания  химикал  в почвата  чрез използвания  метод  за анализ . 
Следва  да се предпочитат , ако такива  са налице , стойности  на токсич­  
ността , изведени  от дългосрочни  изследвания  върху  сублетални  крайни  
точки  (51) (52). Ако не са налични  такива  данни , полезна  информация  
може  да се получи  с изпитване  за остра  токсичност  (вж. напр . (23).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1438
 
9. Следва  да е наличен  подходящ  метод  за анализ , чиито  точност , 
прецизност  и чувствителност  при количественото  определяне  на 
химикала  в изпитвателните  разтвори , в почвата  и в биологичния  
материал , са известни , както  и подробни  данни  за подготовката  на 
пробата  и нейното  съхранение , а също  и информационните  листове  
за безопасност  на веществата . Аналитичните  граници  на откриване  на 
изпитвания  обект  в почвата  и в тъканите  на червеите  трябва  също  да са 
известни . Когато  се използва  изпитван  химикал , белязан  с 14С, трябва  
да се познава  специфичната  радиоактивност  (т.е., Bq mol-1) и 
процентът  радиоактивност , свързан  с примесите . Специфичната  радио­  
активност  на изпитвания  химикал  следва  да бъде  достатъчно  висока  с 
оглед  на улесняване  на анализа , а използваните  концентрации  на 
изпитване  да не предизвикват  токсично  въздействие . 
10. Изпитването  може  да се извърши  с изкуствена  почва  или с естествени  
почви . Преди  започване  на изпитването  (3) (48) трябва  да е налична  
информация  за характеристиките  на използваните  естествени  почви , 
т.е., за произхода  на почвата  или съставките  ѝ, за рН, съдържанието  
на органичен  въглерод , зърнометричния  състав  (процентно  съдържание  
на пясък , прах  и глина ) и за способността  ѝ за задържане  на вода  
(СЗВ). 
ПРИНЦИП  НА ИЗПИТВАНЕТО  
11. Параметрите , които  характеризират  биоакумулацията  на изпитвания  
химикал , включват  коефициента  на биоакумулация  (BAF), константата  
на скоростта  на поглъщане  (k  s ) и константата  на скоростта  на 
елиминиране  (k e ). Определенията  са дадени  в допълнение  1. 
12. Изпитването  се състои  от две фази : фаза  на поглъщане  (експозиция ) и 
фаза  на елиминиране  (след  експозиция ). По време  на фазата  на 
поглъщане  идентични  групи  червеи  се експонират  на почва , в която  
е добавен  изпитваният  химикал . Освен  изпитваните  животни , има и 
контролни  групи  от червеи , които  се държат  при идентични  условия , 
но без изпитвания  химикал . Измерват  се сухото  тегло  и съдържанието  
на липиди  на опитните  организми . Това  може  да се извърши  с червеите  
от контролната  група . Като  се анализират  проби  от червеите  от 
контролните  групи  и от почвата , могат  да се получат  аналитични  
контролни  стойности . За фазата  на елиминиране  червеите  се 
прехвърлят  в почва , несъдържаща  изпитвания  химикал . Фазата  на 
елиминиране  е необходима  във всички  случаи , освен  ако поглъщането  
на химикала  по време  на фазата  на експозиция  е било  незначително . 
Фазата  на елиминиране  дава информация  за скоростта , при която  
изпитваният  химикал  се екскретира  от изпитвания  организъм  (напр . 
(27). Ако по време  на фазата  на поглъщане  не бъде  достигнато  
стационарно  състояние , определянето  на кинетичните  параметри  — 
кинетичният  коефициент  на биоакумулация  BAF  k , константата /ите на 
скоростта  на поглъщане  и елиминиране  — следва  да се основават  за 
предпочитане  на едновременното  коригиране  на резултатите  от фазите  
на поглъщане  и елиминиране . Концентрацията  на изпитвания  химикал  
във/върху  червеите  се следи  по време  на цялото  изпитване  в двете  му 
фази . 
13. По време  на фазата  на поглъщане  измерванията  се правят  при 
вземането  на проби  до 14 дни (енхитреиди ) или до 21 дни (земни  
червеи ), докато  не бъде  достигнато  стационарно  състояние  (11) (12) 
(67). Стационарното  състояние  е достигнато , когато  кривата  на конце­  
нтрацията  в червеите  като функция  на времето  стане  успоредна  на оста 
на времето , и три последователни  анализа  на концентрацията , 
извършени  върху  проби , взети  на интервали  от най-малко  два дни, не 
се различават  с повече  от 20 % един  от друг , въз основа  на статист­  
ически  сравнения  (напр ., анализ  на дисперсията , регресионен  анализ ). 
14. Фазата  на елиминиране  се състои  в прехвърляне  на изпитваните  
организми  в съдове , които  съдържат  същия  субстрат , но без изпитвания  
химикал . По време  на фазата  на елиминиране  измерванията  се правят  
при вземането  на проби  в продължение  на 14 дни (енхитреиди ) или 21 
дни (земни  червеи ), освен  ако по-ранно  аналитично  определяне  не е 
показало  намаляване  с 90 % на остатъчните  вещества  от изпитвания  
химикал  в червеите . Концентрацията  на изпитвания  химикал  в 
червеите  в края  на фазата  на елиминиране  се отчита  като неел­  
иминирани  остатъчни  вещества . За предпочитане  е коефициентът  на ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1439
 
биоакумулация  в стационарно  състояние  (BCFss) да се изчислява  както  
като съотношение  между  концентрацията  в червеите  (Ca) и конце­  
нтрацията  в почвата  (Cs) при видимо  стационарно  състояние , така и 
като кинетичен  коефициент  на биоакумулация  BAFK, т.е., като съот­  
ношение  между  константата  на скоростта  на поглъщане  от почвата  (ks) 
и константата  на скоростта  на елиминиране  (ke) (вж. допълнение  1 за 
определения ), като се предполага  кинетика  от първи  порядък  (вж. 
допълнение  2 за изчислението ). Ако не може  да се приложи  кинетика  
от първи  порядък , следва  да се използват  други  модели . 
15. Константата  на скоростта  на поглъщане , константата  на скоростта  на 
елиминиране  (или константите , когато  се използват  други  модели ), 
кинетичният  коефициент  на биоакумулация  (BAFK), и, когато  е 
възможно , доверителните  граници  на всеки  един  от тези параметри , 
се изчисляват  с помощта  на уравненията  от информатизирания  модел  
(вж. допълнение  2 за насоки ). Пригодността  на даден  модел  може  да се 
определи , напр . от корелационния  коефициент  или от коефициента  на 
определяне  (коефициенти , чиито  стойности  са близки  до единица , 
показват  добра  пригодност ) или от закона  за хи-квадрат . Също  така, 
за пригодността  на модела  може  да съди  от големината  на стандартната  
грешка  или доверителните  интервали  около  очакваните  параметри . 
16. За да се намали  варирането  на резултатите  от изпитването  на химикали  
с висока  липофилност , коефициентите  на биоакумулация  следва  да се 
изразяват  по отношение  на съдържанието  на липиди  и съдържанието  на 
органичен  въглерод  (съдържание  в kg на органичен  въглерод  (ОС) в 
почвата  върху  съдържание  в kg-1 на липиди  в червеите ). Този  подход  
се основава  на факта , че за някои  класове  химикали  има ясна  връзка  
между  потенциала  за биоакумулация  и липофилността ; тази връзка  е 
добре  изяснена  при риби  (47). Има връзка  между  съдържанието  на 
липиди  в рибата  и биоакумулацията  на такива  химикали . За бентосните  
организми  е установена  сходна  корелация , напр . (30) (44). Също  така, 
тази корелация  е установена  за сухоземните  олигохети , напр . (5) (6) (7) 
(14). Ако е налице  достатъчно  количество  тъкан  от червеи , липидното  
съдържание  на изпитваните  животни  може  да се определи  върху  същия  
биологичен  материал , който  се използва  за определяне  на конце­  
нтрацията  на изпитвания  химикал . Друга  възможност  е да се 
използват  контролни  животни  за определяне  на съдържанието  на 
липиди . 
ВАЛИДНОСТ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
17. За да бъде  изпитването  валидно , следва  да са изпълнени  следните  
критерии  както  при контролните , така и при третираните  животни : 
— В края  на изпитването , общата  смъртност  по време  на фазата  на 
поглъщане  и фазата  на елиминиране  не трябва  да надвишава  10 % 
(земни  червеи ) или 20 % (енхитреиди ) от общия  брой  въведени  
червеи . 
— За Eisenia fetida  и Eisenia Andrei,  средната  загуба  на маса , измерена  
в края  на фазата  на поглъщане  и в края  на фазата  на елиминиране , 
не трябва  да надвишава  20 % от началната  маса  (f.w.) в началото  на 
всяка  от фазите . 
ОПИСАНИЕ  НА МЕТОДА  
Животински  видове  за изпитването  
18. За изпитването  за биоакумулация  се препоръчват  няколко  вида  
сухоземни  олигохети . Най-често  използваните  видове  — Eisenia fetida  
или Eisenia andrei  (Lumbricidae), или Enchytraeus albidus , Enchytraeus 
crypticus , или Enchytraeus luxuriosus  (Enchytraeidae) — са описани  в 
допълнение  5. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1440
 
Апаратура  
19. Трябва  внимателно  да се избягва  използването  на материали  за всички  
части  от оборудването , които  могат  да разтворят  или адсорбират  
изпитвания  химикал , или да освободят  друг  химикал  и да окажат  небл­  
агоприятно  въздействие  върху  изпитваните  животни . Могат  да се 
използват  стандартни  правоъгълни  или цилиндрични  резервоари , 
изработени  от химически  инертен  материал  и с подходящ  капацитет , 
които  съответстват  на степента  на зареждане , т.е. на броя  на червеите . 
За оборудването , което  влиза  в контакт  с изпитвателната  среда , могат  
да се използват  неръждаема  стомана , пластмаса  или стъкло . Съдовете  
за изпитване  следва  да са затворени  по подходящ  начин , за да се 
предотврати  излизането  на червеите , но като се осигурява  достатъчен  
приток  на въздух . За химикали  с висок  коефициент  на адсорбция , като 
синтетични  пиретроиди  например , може  да се наложи  използването  на 
силанизирани  стъкла . В такива  ситуации  оборудването  трябва  да се 
изхвърли  след  употреба  (49). Трябва  да се предотврати  изпаряването  
на белязани  с радиоактивен  изотоп  и летливи  изпитвани  обекти . Следва  
да се използват  уловители  (напр . стъклени  бутилки  за промиване  на 
газове ), които  съдържат  подходящи  абсорбенти  за задържане  на 
остатъците , изпаряващи  се от изпитвателните  съдове . 
Почва  
20. Използваната  в изпитването  почва  трябва  да е с качество , което  да 
позволява  оцеляването  и, за предпочитане , възпроизводството  на 
изпитваните  организми  по време  на периодите  на аклиматизация  и 
изпитване , без те да показват  необичаен  външен  вид или поведение . 
Червеите  трябва  да могат  да се заровят  в почвата . 
21. За субстрат  при изпитванията  се препоръчва  да се използва  
изкуствената  почва , описана  в глава  В.8 от настоящото  приложение  
(48). Приготвянето  на изкуствената  почва  за използване  в изпитванията  
за биоакумулация , както  и препоръки  за съхраняването  ѝ, са посочени  
в допълнение  4. Изсушена  на въздух  изкуствена  почва  може  да се 
съхранява  при стайна  температура , докато  не бъде  използвана . 
22. Естествени  почви  от незамърсени  места  обаче  могат  да бъдат  
използвани  в изпитванията  или при отглеждане  на червеите . 
Естествените  почви  следва  да бъдат  характеризирани  най-малко  по 
отношение  на произхода  им (място , от което  са взети ), рН, съдържание  
на органичен  въглерод , зърнометричен  състав  (процент  на пясък , прах  
и глина ), максимална  способност  за задържане  на вода  (СЗВмакс ) и 
процент  на съдържание  на вода  (3). Полезна  информация  преди  
използването  на почвата  може  да се получи  от анализа  на почвата  
или на компонентите  ѝ за микрозамърсители . Ако се използва  почва  
от селскостопанска  земя , тя не трябва  да е третирана  с продукти  за 
растителна  защита  или да е наторявана  с оборска  тор от третирани  
животни  най-малко  една  година , или с органични  торове  най-малко  
шест  месеца  преди  вземането  на пробата  (50). Процедурите  по 
боравене  с естествената  почва  преди  използването  ѝ в лабораторни  
изпитвания  за екотоксичност  са описани  в (3). За естествените  почви  
времето  на съхранение  в лаборатория  следва  да бъде  възможно  най- 
кратко . 
Прилагане  на изпитвания  химикал  
23. Изпитваният  химикал  се смесва  с почвата . Следва  да се вземат  предвид  
физичните  и химичните  свойства  на изпитвания  химикал . Разтворимите  
във вода  изпитвани  химикали  следва  да се разтворят  изцяло  във вода , 
преди  да бъдат  смесени  с почвата . Препоръчваната  процедура  за доба­  
вянето  за малко  разтворимите  във вода  изпитвани  химикали  включва  
покриване  на една  или повече  от една  от съставките  на (изкуствената ) 
почва  с изпитвания  химикал . Например , кварцовият  пясък , или част от 
него , може  да бъде  накиснат  в разтвор  на изпитвания  химикал  в 
подходящ  органичен  разтворител , който  след  това бавно  се изпарява  
до изсушаване . След  това така подготвената  част се смесва  с влажната  
почва . Основното  предимство  на тази процедура  е, че не се въвежда  
разтворител  в почвата . Когато  се използва  естествена  почва , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1441
 
изпитваният  химикал  може  да се прибави  чрез добавяне  в част от 
почвата , изсушена  с въздух , както  е описано  по-горе за изкуствената  
почва , или чрез размесване  с влажната  почва  с последващо  изпаряване , 
ако е използван  разтварящ  агент . Като  цяло , контактът  на влажна  почва  
с разтворители  следва  да се избягва  в рамките  на възможното . Следва  
да се вземе  предвид  следното  (3): 
— ако се използва  разтворител , различен  от вода , той трябва  да може  
да се смесва  с вода  и/или да може  да бъде  елиминиран  (напр . 
изпарен ), като в почвата  остане  само  изпитваният  химикал , 
— ако се използва  контрола  за разтворителя , няма  нужда  от отриц­  
ателна  контрола . Контролата  за разтворителя  следва  да съдържа  
най-високата  концентрация  на разтворителя , добавен  в почвата , 
като използваният  разтворител  трябва  да бъде  от същата  партида , 
от която  е приготвен  изходният  разтвор . Токсичността  и летли­  
востта  на разтворителя , а също  и разтворимостта  на изпитвания  
химикал  в избрания  разтворител  са главните  критерии  за избор  на 
подходящ  подпомагащ  разтварянето  агент . 
24. За малко  разтворимите  във вода  и в органични  разтворители  химикали , 
2,0—2,5 g фино  стрит  кварцов  пясък  на изпитвателен  съд могат  да се 
смесят  с количеството  изпитван  химикал , напр . като се използват  
хаванче  и чукче , така че да се получи  желаната  концентрация  за 
изпитването . Сместа  от кварцов  пясък  и изпитван  химикал  се добавя  
в предварително  навлажнената  почва  и старателно  се смесва  с 
подходящо  количество  дейонизирана  вода , за да се получи  необ­  
ходимото  съдържание  на влага . Крайната  смес  се разпределя  по 
съдовете  за изпитване . Процедурата  се повтаря  за всяка  изпитвателна  
концентрация , и се приготвя  и подходяща  контролна  проба  от 
2,0—2,5 g фино  стрит  кварцов  пясък  за всеки  изпитвателен  съд. 
25. Концентрацията  на изпитвания  химикал  в почвата  трябва  да бъде  
определена  след  добавянето  му. Преди  въвеждането  на изпитваните  
организми  следва  да бъде  проверено  хомогенното  разпределение  на 
изпитвания  химикал  в почвата . Методът , използван  за добавяне  на 
химикала , както  и аргументите  за избор  на конкретна  процедура  за 
добавяне , следва  да бъдат  докладвани  (24).  
26. Преди  въвеждането  на организмите  би било  най-добре , ако е уста­  
новено  равновесие  между  почвата  и фазата  пори -вода ; препоръчва  се 
период  от четири  дни при 20 °С. За множество  малко  разтворими  във 
вода  органични  химикали  времето , необходимо  за достигане  на 
истинско  равновесие  между  адсорбираните  и разтворените  фракции , 
може  да се измерва  в дни или месеци . В зависимост  от целите  на 
изследването , например  когато  трябва  да се наподобят  условията  на 
околната  среда , почвата  с добавката  може  да „отлежава “ по-дълъг  
период , напр . три седмици  при 20 °С (22) за метали . 
Отглеждане  на изпитваните  организми  
27. Червеите  трябва  за предпочитане  да се държат  в условията  на 
непрекъснато  отглеждане  в лаборатория . Насоки  за методите  на 
отглеждане  в лаборатория  за Eisenia fetida  и Eisenia andrei , както  и 
за видовете  енхитреиди , се дават  в допълнение  5 (вж. също  и (48) 
(51) (52).  
28. Червеите , която  се използват  при изпитванията , не трябва  да страдат  от 
никакви  видими  болести , отклонения  и паразити . 
ПРОВЕЖДАНЕ  НА ИЗПИТВАНЕТО  
29. Изпитваните  организми  се излагат  на въздействието  на изпитвания  
химикал  по време  на фазата  на поглъщане . Фазата  на поглъщане  
следва  да продължава  14 дни (енхитреиди ) или 21 дни (земни  
червеи ), освен  ако не се установи , че стационарното  състояние  е пост­  
игнато . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1442
 
30. За фазата  на елиминиране  червеите  се прехвърлят  в почва , несъ­  
държаща  изпитвания  химикал . Първата  проба  се взема  от 4 до 24 
часа след  началото  на фазата  на елиминиране . В допълнение  3 са 
дадени  примери  за схеми  за вземане  на проби  при фаза  на 
поглъщане  с продължителност  21 дни и при фаза  на елиминиране  с 
продължителност  21 дни. 
Изпитвани  организми  
31. При много  видове  сухоземни  енхитреиди  индивидуалното  тегло  е 
много  малко  (напр . 5—10 mg влажно  тегло  на индивид  за Enchytraeus 
albidus  и по-малко  за Enchytraeus crypticus  или Enchytraeus luxuriosus ); 
за да се осъществи  измерване  на теглото  и химически  анализ , може  да 
се наложи  да се съберат  червеите  в съдовете  за повторенията  (т.е., 
всички  червеи  от отделен  съд за повторение  ще бъдат  използвани  за 
получаване  на един  аналитичен  резултат  за тъкан ). 20 отделни  
енхитреиди  се добавят  във всеки  отделен  съд за повторение , като 
следва  да се използват  най-малко  три отделни  повторения . Ако 
границата  на аналитично  откриване  на изпитвания  химикал  е висока , 
може  да са необходими  повече  червеи . За използвани  в изпитванията  
видове  с по-високо  индивидуално  тегло  (Eisenia fetida  и Eisenia andrei ), 
съдовете  за повторение  могат  да съдържат  по един  индивид . 
32. Земните  червеи , използвани  в изпитване , следва  да имат  сходно  тегло  
(напр . Eisenia fetida  и Eisenia andrei  следва  да имат  индивидуално  тегло  
250—600 mg). Енхитреидите  (напр . Enchytraeus albidus ) следва  да имат  
дължина  приблизително  1 cm. Всички  червеи , използвани  в дадено  
изпитване , следва  да идват  от един  и същ източник , и да бъдат  
възрастни  индивиди  с клителум  (вж. допълнение  5). Тъй като теглото  
и възрастта  на животното  могат  да имат  отражение  върху  стойността  
на BAF ( напр . поради  различното  съдържание  на липиди  и/или 
наличието  на яйца ), тези параметри  следва  да се отбелязват  грижливо  
и да се вземат  предвид  при тълкуването  на резултатите . Освен  това, по 
време  на периода  на експозиция  може  да се появят  пашкули , което  
също  има отражение  върху  стойностите  на BAF. Препоръчва  се 
проба  от проба  от опитните  червеи  да се измери  преди  изпитването , 
за да се прецени  средното  влажно  и средното  сухо  тегло . 
33. Следва  да се използва  висок  коефициент  почва /червеи , за да се 
ограничи  до минимум  намаляването  на концентрацията  на изпитвания  
химикал  в почвата  по време  на фазата  на поглъщане . За Eisenia fetida  и 
Eisenia andrei  се препоръчва  минимално  количество  от 50 g сухо  тегло  
(с.т.) почва  на червей , а за енхитреидите  — минимално  количество  от 
10—20 g с.т. почва  на изпитвателен  съд. Съдовете  следва  да съдържат  
слой  почва  от 2—3 cm ( енхитреиди ) или 4—5 cm ( земни  червеи ). 
34. Червеите , използвани  при изпитване , се изваждат  от средата  за 
отглеждане  (напр . за енхитреидите  се използва  златарска  пинсета ). 
Възрастните  организми  се прехвърлят  в нетретирана  изпитвателна  
почва  за аклиматизиране  и се хранят  (вж. точка  36). Ако условията  
на изпитването  се различават  от условията  на отглеждане , фаза  от 
24—72 h следва  да е достатъчна  за адаптирането  на червеите  към 
условията  на изпитване . След  аклиматизирането , земните  червеи  се 
изплакват  чрез прехвърляне  в стъклени  блюда  (напр . стъкло  на 
Петри ), съдържащи  чиста  вода , след  което  се претеглят  преди  да 
бъдат  поставени  в почвата , предназначена  за изпитването . Преди  прет­  
еглянето  следва  да се отстрани  излишната  вода  от червеите , като те 
внимателно  се допират  до ръба  на стъклото  или като се попие  водата  
от тях с помощта  на леко  влажна  хартиена  кърпа . 
35. Поведението  на червеите  по отношение  на заравянето  в почвата  следва  
да се наблюдава  и регистрира . При изпитванията  с дъждовни  червеи , 
животните  (контролни  и третирани ) обикновено  се заравят  в почвата  до 
няколко  часа; това следва  да се провери  не по-късно  от 24 h след  
добавянето  на червеите  в изпитвателните  съдове . Ако земните  червеи  
не се заравят  в почвата  (напр . повече  от 10 % за повече  от половината  
от фазата  на поглъщане ), това означава , че условията  на изпитването  не ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1443
 
са подходящи  или че изпитваните  организми  не са здрави . В такъв  
случай  изпитването  трябва  да се прекрати  и повтори . Енхитреидите  
живеят  главно  в пространствата  между  частиците  на почвата  и 
повърхността  на тялото  им не е в постоянен  контакт  с околния  
субстрат ; експозицията  на енхитреидите  в почвата  и експозицията  на 
тези на повърхността  се смята  за равностойна , и фактът , че те не се 
заравят , не налага  непременно  повтаряне  на изпитването . 
Хранене  
36. Когато  се използва  почва  с ниско  съдържание  на общ органичен  
въглерод , следва  да се разгледа  възможността  за хранене . Когато  се 
използва  изкуствена  почва , за земни  червеи  се препоръчва  хранене  
веднъж  седмично  (т.е., червеите  да се хранят  един  път на седмица ) 
със 7 mg изсушен  оборски  тор на грам  почва  (сухо  тегло ), а за 
енхитреиди  се препоръчва  седмична  дажба  от 2—2,5 mg смлени  
овесени  ядки  на грам  почва  (сухо  тегло ) (11). Първата  дажба  храна  
се смесва  с почвата  непосредствено  преди  добавянето  на изпитваните  
организми . За предпочитане  е да се използва  същият  вид храна  като в 
средата  за отглеждане  (вж. допълнение  5) 
Светлина  и температура  
37. Изпитванията  следва  да се провеждат  при контролиран  цикъл  от 16 
часа светлина  и 8 часа тъмнина , при светлинен  интензитет  в участъка  
с изпитвателните  съдове  за предпочитане  от 400 до 800 lx. 
Температурата  при изпитване  трябва  да бъде  20 ± 2 °C по времето  
на цялото  изпитване . 
Концентрации  на изпитване  
38. Използва  се една -единствена  концентрация . Ситуациите , при които  се 
изискват  допълнителни  концентрации , трябва  да се обосноват . Ако 
токсичността  на изпитвания  химикал  (ECx) е близка  до аналитичната  
граница  на откриване , препоръчва  се използването  на белязан  изпитван  
химикал  с висока  специфична  радиоактивност . За металите  конце­  
нтрацията  трябва  да бъде  над фоновото  равнище  в тъканите  и почвата . 
Повторения  
39. По отношение  на измерванията  на кинетичните  параметри  (фази  на 
поглъщане  и на елиминиране ), минималният  брой  на третираните  
съдове  за повторения  следва  да бъде  три за всеки  момент  на вземане  
на проби . Общият  брой  подготвени  съдове  за повторения  следва  да 
бъде  достатъчен  да се осигурят  проби  за всички  моменти  на вземане  
на проби  през фазите  на поглъщане  и на елиминиране . 
40. За биологичните  наблюдения  и измервания  (напр . съотношението  сухо / 
влажно  тегло , съдържание  на липиди ) и за анализа  на фоновите  конце­  
нтрации  в червеите  и в почвата  се осигуряват  най-малко  12 съда  за 
повторения  с негативна  контрола  (четири  се вземат  за проба  в началото  
на фазата  на поглъщане , четири  — в края  ѝ, и четири  на края  на фазата  
на елиминиране ), ако не е използван  друг  разтворител , освен  вода . Ако 
за прилагането  на изпитвания  химикал  е използван  някакъв  подп­  
омагащ  разтварянето  агент , следва  да се извърши , в допълнение  към 
третираните  повторения , контрол  за разтворителя  (вземат  се проби  от 
четири  съда  за повторения  в началото  на фазата  на поглъщане , четири  
— в края  ѝ, и четири  на края  на фазата  на елиминиране ) с всички  
съставки , с изключение  на изпитвания  обект . В този случай  може  да 
се осигурят  още четири  допълнителни  съда  за повторения  с негативна  
контрола  (без разтворител ) за незадължително  вземане  на проби  в края  
на фазата  на поглъщане . Тези  повторения  може  да се сравнят  
биологично  със съдовете  за контрол  за разтворителя , за да се добие  
информация  за възможното  влияние  на разтворителя  върху  
изпитваните  организми . Препоръчва  се да се подготвят  достатъчно  
допълнителни  запасни  съдове  за повторения  (т.е., осем ) за третираните  
и за контролните  организми . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1444
 
Честота  на измерване  на качеството  на почвата  
41. рН на почвата , съдържанието  на влага  в нея и (постоянната ) 
температура  в помещението , в което  се извършва  изпитването , се 
измерват  в началото  и в края  на фазата  на поглъщане  и на фазата  на 
елиминиране . Веднъж  седмично  съдържанието  на влага  в почвата  се 
контролира , като се претеглят  съдовете , в които  се извършва  
изпитването , и се сравняват  получените  стойности  с първоначалното  
им тегло  им при започване  на изпитването . Загубата  на вода  следва  да 
се компенсира  чрез добавяне  на дейонизирана  вода . 
Вземане  на проби  и анализ  на червеите  и почвата  
42. В допълнение  3 е посочена  примерна  схема  за вземане  на проби  за 
фазите  на поглъщане  и елиминиране  в изпитване  за биоакумулация  
при земни  червеи  и енхитреиди . 
43. Проба  от почвата  от изпитвателните  съдове  за определяне  на конце­  
нтрацията  на изпитвания  химикал  се взема  преди  добавянето  на 
червеите  и по време  на фазата  на поглъщане  и на фазата  на 
елиминиране . По време  на изпитването  се определя  концентрацията  
на изпитвания  химикал  в червеите  и в почвата . По принцип , 
измерват  се общите  концентрации  в почвата . Възможно  е също  да се 
измерва  концентрацията  на водата  в порите ; в този случай  преди  
започването  на изследването  трябва  да се представят  обосновка  и 
подходящи  методи  и същите  следва  да се включат  в отчета  за 
изследването . 
44. Вземат  се най-малко  шест  проби  от почвата  и червеите  по време  на 
фазите  на поглъщане  и елиминиране . Ако е доказана  стабилността  на 
изпитвания  химикал , броят  на анализите  на почвата  може  да се намали . 
Препоръчва  се да се анализират  най-малко  три повторения  в началото  и 
в края  на фазата  на поглъщане . Ако концентрацията  в почвата , 
измерена  в края  на фазата  на поглъщане , се различава  от началната  с 
повече  от 30 %, почвените  проби , взети  на други  дати , също  следва  да 
бъдат  анализирани . 
45. Червеите  от дадено  повторение  се изваждат  от почвата  при всяко  
вземане  на проба  (напр . след  разстилане  на почвата  от повторението  
в плитък  съд и изваждане  на червеите  с помощта  на мека  златарска  
пинсета ), бързо  се изплакват  с вода  в плитък  стъклен  или стоманен  съд. 
Излива  се излишната  вода  (вж. точка  34). Червеите  внимателно  се 
прехвърлят  в предварително  претеглен  съд и незабавно  се претеглят , 
включително  и чревното  съдържимо . 
46. Земните  червеи  (Eisenia  sp.) следва  да се оставят  да изхвърлят  чревното  
си съдържимо  в течение  на една  нощ, напр . върху  влажна  филтърна  
хартия  в покрито  стъкло  на Петри  (вж. точка  34). След  изхвърлянето , 
следва  да се определи  теглото  на червеите , за да се оцени  възможното  
намаляване  на биомасата  в процеса  на изпитването  (вж. критериите  за 
валидност  в точка  17). Претеглянето  и анализът  на тъканите  на 
енхитреидите  се извършва  без изхвърляне  на чревното  съдържимо , 
тъй като това е трудно  от техническа  гледна  точка , поради  малките  
размери  на тези червеи . След  окончателното  определяне  на теглото , 
червеите  следва  незабавно  да се умъртвят , като се използва  най- 
подходящият  метод  (напр . с течен  азот, или чрез замразяване  при 
температура  под –18 °С). 
47. По време  на фазата  на елиминиране , червеите  заместват  замърсеното  
чревно  съдържимо  с чиста  почва . Това  означава , че измерванията , 
извършени  върху  червеи , които  не са изхвърлили  чревното  си 
съдържимо  (в случая  енхитреиди ), от които  са взети  проби  непосредствено  
преди  фазата  на елиминиране , включват  замърсена  почва  от чревното  
съдържимо . За водните  олигохети  се приема , че след първите  4—24 h от 
фазата  на елиминиране , по-голямата  част от замърсеното  чревно  
съдържимо  е заменена  от чист  седимент , (вж. напр . (46). Подобни  конст­  
атации  са направени  за земни  червеи  в рамките  на изследвания  за акум­  
улация  на белязани  цинк  и кадмий  (78). При енхитреиди  с неизхвърлено  
чревно  съдържимо  концентрацията  на тази първа  проба  от фазата  на 
елиминиране  може  да се смята  за концентрация  в тъканите  след 
изхвърляне  на чревното  съдържимо . За да се вземе  предвид  разреждането  
на концентрацията  на изпитвания  обект  от незамърсената  почва  по време  
на фазата  на елиминиране , теглото  на чревното  съдържимо  може  да се 
оцени  от съотношенията  влажно  тегло /тегло  на пепелта  на червеите  или 
сухо  тегло /тегло  на пепелта  на червеите . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1445
 
48. Желателно  е пробите  от почвата  и червеите  да се анализират  веднага  
след  вземането  на проба  (т.е. в рамките  на 1—2 дни) с цел да се 
избегне  разлагането  или други  загуби , като освен  това се препоръчва  
да се изчислят  приблизителните  скорости  на поглъщане  и елиминиране , 
докато  изпитването  продължава . Ако анализът  се забави , пробите  
следва  да се съхраняват  с помощта  на подходящ  метод , напр ., 
дълбоко  замразяване  (≤ –18 °C).  
49. Следва  да се провери  дали  прецизността  и възпроизводимостта  на 
химическия  анализ , както  и дали  аналитичният  добив  на изпитвания  
химикал  от пробите  от почвата  и от червеите  са задоволителни  за 
дадения  метод ; следва  да се отчетат  ефективността  на екстракция , 
границата  на откриване  (LOD) и границата  на количествено  
определяне  (LOQ). Подобно , следва  да се провери  дали  изпитваният  
химикал  не е откриваем  в контролните  съдове  в концентрации , които  
са по-високи  от фона . Когато  концентрацията  на изпитвания  химикал  в 
опитния  организъм  Ca е > 0 в контролните  червеи , тя трябва  да се 
включи  в изчисляването  на кинетичните  параметри  (вж. допълнение  2). 
С всички  проби  следва  да се борави  по начин , който  намалява  до 
минимум  замърсяването  и загубите  (които  напр . могат  да се получат  
при адсорбция  на изпитвания  химикал  от устройството  за вземане  на 
проба ). 
50. Когато  се работи  с белязани  с радиоактивен  изотоп  химикали , 
възможно  е да се анализират  изходни  химикали  и техните  метаболити . 
Количественото  определяне  на изходния  изпитван  химикал  и на мета­  
болитите  при стационарно  състояние  или в края  на фазата  на 
поглъщането  е източник  на важна  информация . След  това пробите  
следва  да се „почистят “, така че изходният  изпитван  химикал  да 
може  да бъде  количествено  определен  отделно . Ако отделни  мета­  
болити  надхвърлят  10 % от общата  радиоактивност  в анализираната  
проба (и), препоръчва  се идентифициране  на тези метаболити . 
51. Общият  добив  и добивът  на изпитвания  химикал  от червеите , почвата , 
и ако са използвани , от уловителите , съдържащи  абсорбенти  за улавяне  
на изпарения  изпитван  химикал , следва  да се регистрират  и отчитат . 
52. Събирането  на индивиди , взети  като проба  от даден  изпитвателен  съд, 
се допуска  за енхитреиди , които  са по-малки  от земните  червеи . Ако 
събирането  предполага  намаляване  на броя  на повторенията , това 
ограничава  статистическите  процедури , които  могат  да се приложат  
към данните . Ако се изискват  конкретни  статистическа  процедура  и 
мощност , тогава  в изпитването  се включват  достатъчен  брой  изпитв­  
ателни  съдове  за повторения , за приспособяване  към желаното  
обединяване , процедура  и мощност . 
53. Препоръчва  се BAF да се изразява  едновременно  като функция  на 
общото  сухо  тегло , и, когато  е необходимо  (т.е. за силно  хидрофобни  
химикали ), като функция  на липидното  съдържание . За определянето  
на липидното  съдържание  следва  да се използват  подходящи  методи  
(някои  съществуващи  методи  — напр . (31) и (58) — следва  да се 
адаптират  за тази цел). В тези методи  се използва  техника  за 
екстракция  с хлороформ /метанол . За да се избегне  употребата  на 
хлорирани  разтворители  обаче , следва  да се използва  измененият  
метод  на Bligh и Dyer (9), описан  в (17). Тъй като различните  методи  
могат  да не дадат  идентични  стойности , важно  е да се дадат  
подробности  за използвания  метод . Когато  е възможно , т.е., ако е 
налице  достатъчно  тъкан  от червеи , анализът  за липиди  в най-добрия  
случай  се прави  върху  същата  проба  или същия  екстракт  като 
използвания  за анализа  за изпитвания  химикал , понеже  липидите  
често  трябва  да се отстраняват  от екстракта , преди  той да бъде  
анализиран  хроматографски  (49). Друга  възможност  е да се използват  
контролни  животни  за определяне  на съдържанието  на липиди  и 
получената  стойност  да се използва  за нормализиране  на стойностите  
на BAF. Последният  подход  намалява  замърсяването  на оборудването  с 
изпитвания  химикал . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1446
 
ДАННИ  И ОТЧИТАНЕ  
Обработка  на резултатите  
54. Кривата  на поглъщането  на изпитвания  химикал  се получава  чрез 
начертаване  на неговата  концентрация  във/върху  червеите  във фазата  
на поглъщането  спрямо  времето  в аритметични  скали . Когато  кривата  
достигне  до плато  или стационарно  състояние , (вж. определенията  в 
допълнение  1), коефициентът  на биоакумулация  при стационарно  
състояние  BAFss се изчислява  от формулата : 
C a в стационарно  състояние  или в края  на фазата  на поглъщане ðсредноÞ 
C s в стационарно  състояние  или в края  на фазата  на поглъщане ðсредноÞ 
C a е концентрацията  на изпитвания  химикал  в изпитвания  организъм  
C s е концентрацията  на изпитвания  химикал  в почвата  
55. Когато  не е достигнато  стационарно  състояние , въз основа  на 
константите  на скоростта  вместо  BAFss се изчислява  BAFK, както  е 
описано  по-долу : 
— Определя  се коефициентът  на акумулация  (BAF  K ) като съотнош­  
ението  k s /k e . 
— Скоростите  на поглъщане  и елиминиране  се изчисляват  за предп­  
очитане  едновременно  (вж. уравнение  11 в допълнение  2). 
— Константата  на скоростта  на елиминиране  (k  e ) обикновено  се 
определя  чрез кривата  на елиминиране  (т.е., графика  на конце­  
нтрацията  на изпитвания  обект  в червеите  по време  на фазата  на 
елиминирането ). След  това се изчислява  константата  на скоростта  
на поглъщане  k s при дадени  k e и стойност  на C a , която  се получава  
от кривата  на поглъщането  — вж. приложение  2 за описание  на 
тези методи . Предпочитаният  метод  за получаване  на BAF  K и 
константите  за скорост  k s и k e , е да се използват  нелинейни  парам­  
етрични  изчислителни  методи  на компютър . Ако е очевидно , че към 
елиминирането  не може  да се приложи  кинетика  от първи  порядък , 
следва  да се използват  по-сложни  модели . 
Протокол  от изпитването  
56. Докладът  от изпитването  следва  да включва  следната  информация : 
Изпитван  химикал : 
— всяка  налична  информация  относно  острата  или дългосрочната  им 
токсичност  (напр . EC  x , LC  x , NOEC) на изпитвания  химикал  към 
обитаващи  почвата  олигохети , 
— чистота , физична  природа  и физични  и химични  свойства  — напр . 
log K  ow , разтворимост  във вода , 
— данни  за неговата  химична  идентификация ; източник  на изпитвания  
обект , идентичност  и концентрация  на използвания  разтворител , ако 
има такъв , 
— ако е използван  белязан  с радиоактивен  изотоп  химикал , точно  
положение  на белязаните  атоми , специфичната  радиоактивност  и 
радиохимичната  чистота . 
Животински  вид за изпитването : 
— научно  име, порода , източник , всякаква  предварителна  обработка , 
аклиматизация , възраст , обхват  на размера  и т.н. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1447
 
Условия  на изпитването : 
— използвана  процедура  на изпитване , 
— тип и характеристики  на използваното  осветление  и 
фотопериода (ите), 
— план  на изпитването  (например  брой  и размер  на съдовете  за 
изпитване , маса  на почвата  и дебелина  на почвения  слой , брой  на 
повторенията , брой  на изпитвателните  концентрации , време  на 
поглъщане  и време  на елиминиране , честота  на вземане  на проби ), 
— обосновката  за избора  на материала  на изпитвателните  съдове , 
— метод  за приготвяне  на изпитвания  обект  и метод  за прилагането  
му, обосновка  на избора  на конкретен  метод , 
— номинални  концентрации  на изпитване , средни  величини  на 
измерените  стойности  и техните  стандартни  отклонения  в изпитват­  
елните  съдове  и метод , по който  са получени  тези величини , 
— източник  на съставките  на изкуствената  почва  или — ако е 
използвана  естествена  среда  — произход  на почвата , описание  на 
предварителната  подготовка , резултати  от контролите  
(преживяване , увеличение  на биомасата , възпроизводство ) 
характеристики  на почвата  (рН, съдържание  на общ органичен  
въглерод , зърнометричен  състав  (процент  пясък , прах  и глина ), 
максимална  способност  за задържане  на вода , процент  вода  в 
началото  и в края  на изпитването , други  извършени  измервания ), 
— подробна  информация  за обработката  на пробите  почва  и червеи , 
включително  подробности  за процедурите  по изготвяне , 
съхранение , добавяне  на изпитвания  обект , екстракция  и анал­  
итични  процедури  (в това число  и прецизност ) за изпитвания  
обект  в червеите  и почвата  и липидното  съдържание  (ако се 
измерва ), както  и добива  на изпитвания  обект . 
Резултати : 
— смъртност  на контролните  червеи  и на червеите  във всеки  изпитв­  
ателен  съд и всякакво  наблюдавано  необичайно  поведение  (напр . 
избягване  на почвата , липса  на размножаване  в изпитването  за 
биоакумулация  с енхитреиди ), 
— съотношението  между  сухото  тегло  и влажното  тегло  на почвата  и 
изпитваните  организми  (полезно  за нормализацията ), 
— влажното  тегло  на червеите  по всяко  време  на вземане  на проби ; по 
отношение  на земните  червеи , влажното  тегло  в началото  на 
изпитването  и по всяко  време  на вземане  на проби  преди  и след  
изхвърлянето  на чревното  съдържимо , 
— липидно  съдържание  на изпитваните  организми  (ако е определяно ), 
— криви , показващи  кинетиката  на поглъщане  на изпитвания  химикал  
и елиминирането  от него  в червеите , както  и времето  за достигане  
до стационарно  състояние , 
— C  a и C s (със стандартно  отклонение  и обхват , ако е уместно ) за 
всички  времена  на вземане  на проби  (C  a изразено  в g kg  –1 влажно  
и сухо  тегло  от цялото  тяло , C s изразено  в g kg  –1 влажно  и сухо  
тегло  на почвата ). Ако е необходим  коефициентът  на акумулация  
биота /почва  (BSAF) ( напр . за сравняване  на резултатите  от две или 
повече  изпитвания , проведени  с животни  с различно  съдържание  на 
липиди ), C  a може  допълнително  да се изрази  като g kg  –1 липидно  
съдържание  на организма , а C s може  да се изрази  като g kg  –1 
органичен  въглерод  (ОС) на почвата , 
— BAF ( изразено  в kg почва  ·kg –1 червеи ), скорост  на поглъщане  в 
почвата  (изразена  в g почва· kg –1 червеи  ден  –1 ), и константа  на 
скоростта  на елиминиране  (изразена  в ден  –1 ); BSAF ( изразен  в kg 
почва  OC kg  –1 липидно  съдържание  на червеите ) може  да се отчете  
допълнително , ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1448
 
— ако е измервано : проценти  на изходния  химикал , метаболити  и 
свързани  остатъчни  вещества  (т.е., процент  от изпитвания  
химикал , който  не може  да бъде  екстрахиран  с помощта  на 
обичайните  методи  за екстракция ) открити  в почвата  и изпитваните  
животни , 
— методи , използвани  за статистически  анализ  на данните . 
Оценка  на резултатите : 
— съответствие  на резултатите  с критериите  за валидност , изброени  в 
точка  17, 
— неочаквани  или необичайни  резултати , напр . непълно  елиминиране  
на изпитваните  животни  от изпитвания  химикал . 
ПРЕПРАТКИ : 
(1) Amorim M (2000). Chronic and toxicokinetic behavior of Lindane 
(γ-HCH) in the Enchytraeid Enchytraeus albidus. Master thesis, University 
Coimbra.  
(2) ASTM (2000). Standard guide for the determination of the bioaccumulation 
of sediment-associated contaminants by benthic invertebrates. American 
Society for Testing and Materials, E 1688-00a.  
(3) ASTM International (2004). Standard guide for conducting laboratory soil 
toxicity or bioaccumulation tests with the Lumbricid earthworm  Eisenia 
fetida  and the Enchytraeid potworm  Enchytraeus albidus.  ASTM Interna ­
tional, E1676-04: 26 pp.  
(4) Beek B, Boehling S, Bruckmann U, Franke C, Joehncke U, Studinger G 
(2000). The assessment of bioaccumulation. In Hutzinger, O. (editor), The Handbook of Environmental Chemistry, Vol. 2 Part J (Vol. editor: B. 
Beek): Bioaccumulation - New Aspects and Developments. 
Springer-Verlag Berlin Heidelberg: 235-276.
 
(5) Belfroid A, Sikkenk M, Seinen W, Van Gestel C, Hermens J (1994). The 
toxicokinetic behavior of chlorobenzenes in earthworms ( Eisenia andrei ): 
Experiments in soil. Environ. Toxicol. Chem. 13: 93-99.  
(6) Belfroid A, Van Wezel A, Sikkenk M, Van Gestel C, Seinen W & 
Hermens J (1993). The toxicokinetic behavior of chlorobenzenes in 
earthworms ( Eisenia andrei ): Experiments in water. Ecotox. Environ. 
Safety 25: 154-165.  
(7) Belfroid A, Meiling J, Drenth H, Hermens J, Seinen W, Van Gestel C 
(1995). Dietary uptake of superlipophilic compounds by earthworms 
(Eisenia andrei ). Ecotox. Environ. Safety 31: 185-191.  
(8) Bell AW (1958). The anatomy of  Enchytraeus albidus , with a key to the 
species of the genus  Enchytraeus.  Ann. Mus. Novitat. 1902: 1-13.  
(9) Bligh EG and Dyer WJ (1959). A rapid method of total lipid extraction and 
purification. Can. J. Biochem. Pysiol. 37: 911-917.  
(10) Bouche M (1972). Lombriciens de France. Ecologie et Systematique. 
INRA, Annales de Zoologie-Ecologie animale, Paris, 671 p.  
(11) Bruns E, Egeler Ph, Moser T, Römbke J, Scheffczyk A, Spörlein P 
(2001a). Standardisierung und Validierung eines Bioakkumulationstests mit terrestrischen Oligochaeten. Report to the German Federal Environ ­
mental Agency (Umweltbundesamt Berlin), R&D No.: 298 64 416.
 
(12) Bruns E, Egeler Ph, Römbke J Scheffczyk A, Spörlein P (2001b). Bioaccu ­
mulation of lindane and hexachlorobenzene by the oligochaetes  
Enchytraeus luxuriosus  and  Enchytraeus albidus  (Enchytraeidae, Oligoc ­
haeta, Annelida). Hydrobiologia 463: 185-196.  
(13) Conder JM and Lanno RP (2003). Lethal critical body residues as measures 
of Cd, Pb, and Zn bioavailability and toxicity in the earthworm  Eisenia 
fetida.  J. Soils Sediments 3: 13-20.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1449
 
(14) Connell DW and Markwell RD (1990). Bioaccumulation in the Soil to 
Earthworm System. Chemosphere 20: 91-100.  
(15) Didden WAM (1993). Ecology of Terrestrial Enchytraeidae. Pedobiologia 
37: 2-29.  
(16) Didden W (2003). Oligochaeta, In: Bioindicators and biomonitors. Markert, 
B.A., Breure, A.M. & Zechmeister, H.G. (eds.). Elsevier Science Ltd., The Netherlands, pp. 555-576.
 
(17) De Boer J, Smedes F, Wells D, Allan A (1999). Report on the QUASH 
interlaboratory study on the determination of total-lipid in fish and shel ­
lfish. Round 1 SBT-2, Exercise 1000, EU, Standards, Measurement and Testing Programme.
 
(18) Dietrich DR, Schmid P, Zweifel U, Schlatter C, Jenni-Eiermann S, 
Bachmann H, Bühler U, Zbinden N (1995). Mortality of birds of prey 
following field application of granular carbofuran: A Case Study. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 29: 140-145.
 
(19) Регламент  (ЕО) № 1907/2006 на Европейския  парламент  и на Съвета  
от 18 декември  2006 г. относно  регистрацията , оценката , 
разрешаването  и ограничаването  на химикали  (REACH), за създаване  
на Европейска  агенция  по химикали , за изменение  на Директива  
1999/45/ЕО и за отмяна  на Регламент  (ЕИО ) № 793/93 на Съвета  и 
Регламент  (ЕО) № 1488/94 на Комисията , както  и на Директива  
76/769/ЕИО  на Съвета  и директиви  91/155/ ЕИО , 93/67/ ЕИО , 
93/105/ЕО и 2000/21/ ЕО на Комисията  (ОВ L 396, 30.12.2006 г., 
стр. 1). 
(20) Edwards CA and Bohlen PJ (1996). Biology and ecology of earthworms. 
Third Edition, Chapman & Hall, London, 426 pp.  
(21) OECD (2008),  Bioaccumulation in Sediment-dwelling Benthic Oligochates , 
Test Guideline № 315, Guidelines for the testing of chemicals, OECD, 
Paris  
(22) Egeler Ph, Gilberg D, Scheffczyk A, Moser Th and Römbke J (2009). 
Validation of a Soil Bioaccumulation Test with Terrestrial Oligochaetes 
by an International Ring Test (Validierung einer Methode zur standardi ­
sierten Messung der Bioakkumulation mit terrestrischen Oligochaeten). Report to the Federal Environmental Agency (Umweltbundesamt 
Dessau-Rosslau), R&D No.: 204 67 458: 149 pp. Достъпно  за 
копиране  на следния  адрес  в Интернет : http://www.oecd.org/dataoecd/ 
12/20/42552727.pdf.
 
(23) Elmegaard N and Jagers op Akkerhuis GAJM (2000). Safety factors in 
pesticide risk assessment, Differences in species sensitivity and 
acute-chronic relations. National Environmental Research Institute, NERI 
Technical Report 325: 57 pp.  
(24) Environment Canada (1995). Guidance document on measurement of 
toxicity test precision using control sediments spiked with a reference 
toxicant. Environmental Protection Series Report EPS 1/RM/30.  
(25) EPPO (2003). Environmental Risk Assessment scheme for plant protection 
products. Soil organisms and functions, EPPO (European Plant Protection Organization) Standards, Bull, OEPP/EPPO 33: 195-208.
 
(26) Franke C (1996). How meaningful is the bioconcentration factor for risk 
assessment? Chemosphere 32: 1897-1905.  
(27) Franke C, Studinger G, Berger G, Böhling S, Bruckmann U, 
Cohors-Fresenborg D, Jöhncke U (1994). The assessment of bioaccumu ­
lation. Chemosphere 29: 1501-1514.  
(28) Füll C (1996). Bioakkumulation und Metabolismus von -1,2,3,4,5,6- 
Hexachlorcyclohexan (Lindan) und 2-(2,4-Dichlorphenoxy)-propionsäure 
(Dichlorprop) beim Regenwurm  Lumbricus rubellus  (Oligochaeta, Lumbri ­
cidae). Dissertation University Mainz, 156 pp.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1450
 
(29) Füll C, Schulte C, Kula C (2003). Bewertung der Auswirkungen von 
Pflanzenschutzmitteln auf Regenwürmer. UWSF - Z. Umweltchem, 
Ökotox. 15: 78-84.  
(30) Gabric A.J, Connell DW, Bell PRF (1990). A kinetic model for bioconcen ­
tration of lipophilic compounds by oligochaetes. Wat. Res. 24: 1225-1231.  
(31) Gardner WS, Frez WA, Cichocki EA, Parrish CC (1985). Micromethods 
for lipids in aquatic invertebrates. Limnology and Oceanography 30: 1099- 1105.
 
(32) Hawker DW and Connell DW (1988). Influence of partition coefficient of 
lipophilic compounds on bioconcentration kinetics with fish. Wat. Res. 22: 
701-707.  
(33) Hund-Rinke K and Wiechering H (2000). Earthworm avoidance test for 
soil assessments: An alternative for acute and reproduction tests. J. Soils Sediments 1: 15-20.
 
(34) Hund-Rinke K, Römbke J, Riepert F, Achazi R (2000). Beurteilung der 
Lebensraumfunktion von Böden mit Hilfe von Regenwurmtests. In: Toxi ­
kologische Beurteilung von Böden. Heiden, S., Erb, R., Dott, W. & Eisen ­
traeger, A. (eds.), Spektrum Verl., Heidelberg, 59-81.  
(35) ISO 11268-2 (1998) Soil Quality – Effects of pollutants on earthworms 
(Eisenia fetida ). Part 2: Determination of effects on reproduction.  
(36) Jaenike J (1982). „ Eisenia foetida “ is two biological species. Megadrilogica 
4: 6-8.  
(37) Jager T (1998). Mechanistic approach for estimating bioconcentration of 
organic chemicals in earthworms (Oligochaeta). Environ. Toxicol. Chem. 17: 2080-2090.
 
(38) Jager T, Sanchez PA, Muijs B, van der Welde E, Posthuma L (2000). 
Toxicokinetics of polycyclic aromatic hydrocarbons in  Eisenia andrei  (Oli­
gochaeta) using spiked soil. Environ. Toxicol. Chem. 19: 953-961.  
(39) Jager T, Baerselman R, Dijkman E, De Groot AC, Hogendoorn EA, 
DeJong A, Kruitbosch JAW, Peijnenburg W J G. M (2003a). Availability of polycyclic aromatic hydrocarbons to earthworms ( Eisenia andrei , 
Oligochaeta) in field-polluted soils and soil-sediment mixtures. Environ. 
Toxicol. Chem. 22: 767-775.
 
(40) Jager T, Fleuren RLJ, Hoogendoorn E, de Korte G (2003b). Elucidating the 
routes of exposure for organic chemicals in the earthworm,  Eisenia andrei  
(Oligochaeta). Environ. Sci. Technol. 37: 3399-3404.  
(41) Janssen MPM, Bruins A, De Vries TH, Van Straalen NM (1991). 
Comparison of cadmium kinetics in four soil arthropod species. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 20: 305-312.
 
(42) Kasprzak K (1982). Review of enchytraeid community structure and 
function in agricultural ecosystems. Pedobiologia 23: 217-232.  
(43) Khalil AM (1990). Aufnahme und Metabolismus von  14 C-Hexachlorbenzol 
und  14 C-Pentachlornitrobenzol in Regenwürmern. Dissertation University 
München, 137 pp.  
(44) Landrum PF (1989). Bioavailability and toxicokinetics of polycyclic 
aromatic hydrocarbons sorbed to sediments for the amphipod  Pontoporeia 
hoyi.  Environ. Sci. Toxicol. 23: 588-595.  
(45) Marinussen MPJC, Van der Zee SEATM, De Haan FA (1997). Cu accu ­
mulation in  Lumbricus rubellus  under laboratory conditions compared with 
accumulation under field conditions. Ecotox. Environ. Safety 36: 17-26.  
(46) Mount DR, Dawson TD, Burkhard LP (1999). Implications of gut purging 
for tissue residues determined in bioaccumulation testing of sediment with  
Lumbriculus variegates.  Environ. Toxicol. Chem. 18: 1244-1249.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1451
 
(47) Nendza M (1991). QSARs of bioaccumulation: Validity assessment of log 
K ow /log BCF correlations, In: R. Nagel and R. Loskill (eds.): Bioaccumu ­
lation in aquatic systems, Contributions to the assessment, Proceedings of an international workshop, Berlin 1990, VCH, Weinheim.
 
(48) Глава  В.8 от настоящото  приложение , Токсичност  за земни  червеи  
(49) Глава  В.13 от настоящото  приложение , Биоакумулация : проточен  тест 
върху  риби . 
(50) Глава  В.21 от настоящото  приложение , Почвени  микроорганизми : 
Изпитване  на азотната  трансформация . 
(51) OECD (2004a), Enchytraeid reproduction test, Test Guideline № 220, 
Guidelines for the testing of chemicals, OECD, Paris.  
(52) Oecd (2004b), Earthworm reproduction test (Eisenia fetida/Eisenia Andrei), 
Test Guideline № 222, Guidelines for the testing of chemicals, OECD, 
Paris.  
(53) OECD (2008), Bioaccumulation in Sediment-dwelling Benthic Oligochates, 
Test Guideline № 315, Guidelines for the testing of chemicals, OECD, 
Paris  
(54) Petersen H and Luxton M (1982). A comparative analysis of soil fauna 
populations and their role in decomposition processes. Oikos 39: 287-388.  
(55) Phillips DJH (1993). Bioaccumulation. In: Handbook of Ecotoxicology 
Vol. 1. Calow P. (ed.). Blackwell Scientific Publ., Oxford. 378-396.  
(56) Pflugmacher J (1992). Struktur-Aktivitätsbestimmungen (QSAR) zwischen 
der Konzentration von Pflanzenschutzmitteln und dem Octanol-Wasser- Koeffzienten UWSF- Z. Umweltchem. Ökotox. 4: 77-81.
 
(57) Posthuma L, Weltje L, Anton-Sanchez FA (1996). Joint toxic effects of 
cadmium and pyrene on reproduction and growth of the earthworm  Eisenia 
fetida.  RIVM Report № 607506001, Bilthoven.  
(58) Randall RC, Lee II H, Ozretich RJ, Lake JL, Pruell RJ (1991). Evaluation 
of selected lipid methods for normalising pollutant bioaccumulation. Envi ­
ron.Toxicol. Chem. 10: 1431-1436.  
(59) Römbke J, Egele, P, Füll C (1998). Literaturstudie über Bioakkumulation ­
stests mit Oligochaeten im terrestrischen Medium. UBA-Texte 28/98, 84 S.  
(60) Römbke J and Moser Th (1999). Organisation and performance of an 
international ring-test for the validation of the Enchytraeid reproduction test. UBA-Texte 4/99: 373 pp.
 
(61) Römbke J, Riepert F, Achazi R (2000). Enchytraeen als Testorganismen, 
In: Toxikologische Beurteilung von Böden. Heiden, S., Erb, R., Dott, W. & Eisentraeger, A. (eds.). Spektrum Verl., Heidelberg. 105-129.
 
(62) Romijn CA.FM, Luttik R, Van De Meent D, Slooff W,Canton JH (1993). 
Presentation of a General Algorithm to Include Effect Assessment on 
Secondary Poisoning in the Derivation of Environmental Quality Criteria, 
Part 2: Terrestrial food chains. Ecotox. Envir. Safety 27: 107-127.  
(63) Sample BE, Suter DW, Beauchamp JJ, Efroymson RA (1999). 
Literature-derived bioaccumulation models for earthworms: Development and validation. Environ. Toxicol. Chem. 18: 2110-2120.
 
(64) Schlosser H-J and Riepert F (1992). Entwicklung eines Prüfverfahrens für 
Chemikalien an Bodenraubmilben (Gamasina), Teil 2: Erste Ergebnisse mit Lindan und Kaliumdichromat in subletaler Dosierung. Zool. Beitr. NF 34: 
413-433.
 
(65) Schmelz R and Collado R (1999).  Enchytraeus luxuriosus  sp. nov., a new 
terrestrial oligochaete species (Enchytraeide, Clitellata, Annelida). 
Carolinea 57: 93–100.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1452
 
(66) Sims R W and Gerard BM (1985). Earthworms, In: Kermack, D. M. & 
Barnes, R. S. K. (Hrsg.): Synopses of the British Fauna (New Series) 
№ 31. 171 S. London: E. J. Brill/Dr. W. Backhuys.  
(67) Sousa JP, Loureiro S, Pieper S, Frost M, Kratz W, Nogueira AJA, Soares 
AMVM (2000). Soil and plant diet exposure routes and toxicokinetics of lindane in a terrestrial isopod. Environ. Toxicol. Chem. 19: 2557–2563.
 
(68) Spacie A and Hamelink JL (1982). Alternative models for describing the 
bioconcentration of organics in fish. Environ. Toxicol. Chem. 1, 309-320.  
(69) Stephenson GL, Kaushik A, Kaushik NK, Solomon KR, Steele T, 
Scroggins RP (1998). Use of an avoidance-response test to assess the 
toxicity of contaminated soils to earthworms. In: Advances in earthworm 
ecotoxicology. S. Sheppard, J. Bembridge, M. Holmstrup, L. Posthuma (eds.). Setac Press, Pensacola, 67-81.
 
(70) Sterenborg I, Vork NA, Verkade SK, Van Gestel CAM, Van Straalen NM 
(2003). Dietary zinc reduces uptake but not metallothionein binding and 
elimination of cadmium in the springtail  Orchesella cincta.  Environ. 
Toxicol. Chemistry 22: 1167-1171.  
(71) UBA (Umweltbundesamt) (1991). Bioakkumulation - Bewertungskonzept 
und Strategien im Gesetzesvollzug. UBA-Texte 42/91. Berlin.  
(72) US EPA (2000). Methods for measuring the toxicity and bioaccumulation 
of sediment-associated contaminants with freshwater invertebrates. Second Edition, EPA 600/R-99/064, US, Environmental Protection Agency, 
Duluth, MN, March 2000.
 
(73) Van Brummelen TC and Van Straalen NM (1996). Uptake and elimination 
of benzo(a)pyrene in the terrestrial isopod  Porcellio scaber.  Arch. Environ. 
Contam. Toxicol. 31: 277-285.  
(74) Van Gestel CAM. (1992). The influence of soil characteristics on the 
toxicity of chemicals for earthworms; a review, In: Ecotoxicology of 
Earthworms (Ed. Becker, H, Edwards, PJ, Greig-Smith, PW & 
Heimbach, F). Intercept Press, Andover (GB).  
(75) Van Gestel CA and Ma W-C (1990). An approach to quantitative 
structure-activity relationships (QSARs) in earthworm toxicity studies. Chemosphere 21: 1023-1033.
 
(76) Van Straalen NM, Donker MH, Vijver MG, van Gestel CAM (2005). 
Bioavailability of contaminants estimated from uptake rates into soil inver ­
tebrates. Environmental Pollution 136: 409-417.  
(77) Venter JM and Reinecke AJ (1988). The life-cycle of the compost-worm  
Eisenia fetida  (Oligochaeta). South African J. Zool. 23: 161-165.  
(78) Vijver MG, Vink JPM, Jager T, Wolterbeek HT, van Straalen NM, van 
Gestel CAM (2005). Biphasic elimination and uptake kinetics of Zn and Cd in the earthworm  Lumbricus rubellus  exposed to contaminated 
floodplain soil. Soil Biol, Biochem. 37: 1843-1851.
 
(79) Widianarko B and Van Straalen NM (1996). Toxicokinetics-based survival 
analysis in bioassays using nonpersistent chemicals, Environ. Toxicol. 
Chem. 15: 402–406.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1453
 
Допълнение  1 
ОПРЕДЕЛЕНИЯ  
Биоакумулация  е увеличаването  на концентрацията  на изпитвания  
химикал  във или върху  организъм , отнесено  към концентрацията  на 
изпитвания  химикал  в заобикалящата  среда . Биоакумулацията  настъпва  в 
резултат  на процесите  на биоконцентрация  и биомултипликация  (вж. по- 
долу ). 
Биоконцентрация  е увеличаването  на концентрацията  на изпитвания  
химикал  във или върху  организъм , което  настъпва  в резултат  на 
поглъщане  на химикала  единствено  от заобикалящата  среда  (т.е., чрез 
повърхността  на тялото  или погълнатата  почва ), отнесено  към конце­  
нтрацията  на изпитвания  химикал  в заобикалящата  среда . 
Биомултипликация  е увеличаването  на концентрацията  на изпитвания  
химикал  във или върху  организъм , което  настъпва  в резултат  главно  на 
поглъщане  от замърсени  храна  или плячка , отнесено  към концентрацията  
на изпитвания  химикал  в храната  или плячката . Биомултипликацията  може  
да доведе  до пренос  или акумулация  на изпитвания  обект  в хранителните  
мрежи . 
Елиминиране  от изпитвания  химикал  е загубата  на този химикал  от 
тъканите  на изпитвания  организъм  благодарение  на активни  или пасивни  
процеси , която  се получава  независимо  от наличието  или липсата  на 
изпитвания  обект  в заобикалящата  среда . 
Коефициент  на биоакумулация  (BAF), по всяко  време  на фазата  на 
поглъщане  в настоящото  изпитване  за акумулиране , е концентрацията  на 
изпитвания  химикал  във/върху  изпитвания  организъм  (C a в g·kg -1 сухо  тегло  
на червеи ), разделена  на концентрацията  на химикала  в заобикалящата  
среда  (C  s като g·kg -1 сухо  тегло  на почвата ); BAF се измерва  в kg 
почва  kg -1 червеи . 
Коефициент  на биоакумулация  в стационарно  състояние  (BCF  SS ) е BAF 
при стационарно  състояние  и не се променя  съществено  за дълъг  период  от 
време , като концентрацията  на изпитвания  химикал  в заобикалящата  среда  
(C s като g.kg  -1 сухо  тегло  на почвата ) през този период  е константа . 
Коефициентите  на биоакумулация  се изчисляват  директно  от съотнош­  
ението  между  константата  на скоростта  на поглъщане  от почвата  и 
константата  на скоростта  на елиминиране  (k  s и k e , вж. по-долу ) и се 
наричат  кинетични  коефициенти  на биоакумулация  (BAF  K ). 
Коефициент  на акумулация  биота -почва  (BSAF) е нормализираната  по 
отношение  на липидите  концентрация  на изпитвания  химикал  във/върху  
изпитвания  организъм , разделена  на нормализираната  по отношение  на 
органичния  въглерод  концентрация  на изпитвания  химикал  в почвата  при 
стационарно  състояние . C  a се изразява  в g·kg -1 липидно  съдържание  на 
организма , а C s като g·kg -1 органично  съдържание  на почвата ; BSAF се 
измерва  в kg органичен  въглерод  kg -1 липиди . 
Състояние  на плато  или стационарно  състояние  се определя  като 
състояние  на равновесие  между  процесите  на поглъщане  и елиминиране , 
които  протичат  едновременно  по време  на фазата  на експозиция . 
Стационарното  състояние  е достигнато  в графиката  на BAF като функция  
от времето , когато  кривата  стане  успоредна  на оста на времето  и три после­  
дователни  анализа  на BAF върху  проби , взети  на интервали  от най-малко  
два дни, не се различават  с повече  от 20 % един  от друг , и няма  статист­  
ически  значима  разлика  между  трите  периода  на вземане  на проби . За 
изпитвани  химикали , които  се поглъщат  бавно , е по-подходящо  интервалите  
да бъдат  по седем  дни (49).  
Коефициент  на разпределение  органичен  въглерод -вода  (K oc ) е съотнош­  
ението  между  концентрацията  на химикала  в/върху  съдържащата  органичен  
въглерод  част от почвата  и концентрацията  в равновесие  на химикала  във 
вода . 
Коефициентът  на разпределение  октанол -вода  (K  ow ) е съотношението  на 
разтворимостта  на химикала  в n-октанол  и вода  при равновесно  състояние , 
изразяван  също  като P ow . Логаритъмът  от K ow (log K  ow ) се използва  като 
указание  на потенциала  на химикала  за биоакумулация  във водни  орга­  
низми . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1454
 
Фазата  на експозиция  или поглъщане  е времето , през което  изпитваните  
организми  са експонирани  на изпитвания  химикал . 
Константата  на скоростта  на поглъщане  от почвата  (k  s ) е числена  
стойност , определяща  скоростта  на нарастване  на концентрацията  на 
изпитвания  обект  във/върху  изпитвания  организъм , настъпваща  в резултат  
на поглъщане  от почвената  фаза . k s се изразява  в g почва  kg -1 червеи  дни  -1 . 
Фаза  на елиминиране  е времето , което  следва  след  прехвърлянето  на 
изпитваните  организми  от замърсена  среда  в среда , несъдържаща  
изпитвания  обект , през което  време  се изследва  елиминирането  (или 
нетната  загуба ) на химикала  от изпитваните  организми . 
Константата  на скоростта  на елиминиране  (k  e ) е числена  стойност , 
определяща  скоростта  на намаляване  на концентрацията  на изпитвания  
обект  във/върху  изпитвания  организъм , настъпваща  след  прехвърлянето  на 
изпитвания  организъм  от среда , съдържаща  изпитвания  обект  в среда , несъ­  
държаща  изпитвания  химикал . k e се изразява  в дни  -1 . 
Изпитван  химикал : Всяко  вещество  или смес , изпитвано (а) чрез 
използването  на настоящия  метод  за изпитване . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1455
 
Допълнение  2 
Изчисляване  на параметрите  на поглъщане  и елиминиране  
Основната  крайна  точка  на изпитването  за биоакумулация  е коефициентът  
на биоакумулация , BAF. Измереният  BAF може  да се изчисли  като се 
раздели  концентрацията  в опитния  организъм , C  a, на концентрацията  в 
почвата , C  s , при стационарно  състояние . Ако по време  на фазата  на 
поглъщане  не е достигнато  стационарно  състояние , BAF  K се изчислява  
въз основа  на константите  на скоростта , вместо  въз основа  на BAFss. 
Следва  обаче  да се отбележи  дали  BAF се основава  на концентрациите  
при стационарно  състояние , или не. 
Обичайният  начин  за получаване  на кинетичния  коефициент  на биоакум­  
улация  (BAF  K ), константата  на скоростта  на поглъщане  от почвата  (k s ) и 
константата  на скоростта  на елиминиране  (k  e ), е да се използват  
компютърни  нелинейни  методи  за оценка  на параметрите , например , въз 
основа  на моделите , описани  в (68). При зададен  набор  от последователни  
данни  за концентрацията  като функция  от времето  и уравненията , описващи  
модела : 
C a ¼ k s 
k e Ü C s ð1 Ä e –k e t Þ 0 < t < t  c [уравнение  1] 
или 
C a ¼ k s 
k e Ü C s ðe –k e ðtÄtcÞ Ä e –k e t Þ t > t  c [уравнение  2] 
където  
C a = концентрация  на химикала  в червеи  [g kg  -1 влажно  или сухо  тегло ] 
k s = константа  на скоростта  на поглъщане  в тъкани  [g почва  kg -1 червеи  
ден  -1 ] 
C s = концентрация  на химикала  в почва  [g kg  -1 влажно  или сухо  тегло ] 
k e = константата  на скоростта  на елиминиране  [дни  -1 ] 
t c = време  в края  на фазата  на поглъщане , 
тези компютърни  програми  изчисляват  стойности  за BAF  K , k s и k e . 
Когато  фоновата  концентрация  на неекспонирани  червеи , например  в ден 0, 
значително  се различава  от нула  (както  може  да бъде  при металите ), тази 
фонова  концентрация  (C a,0 ) следва  да бъде  включена  в уравненията , така че 
те да приемат  вида : 
C a ¼ C a;0 þ k s 
k e Ü C s ð1 Ä e –k e t Þ 0 < t < t  c [уравнение  3] 
и 
C a ¼ C a;0 þ k s 
k e Ü C s ðe –k e ðtÄtcÞ Ä e –k e t Þ t > t  c [уравнение  4] 
В случаите , когато  се наблюдава  значително  намаляване  на концентрацията  
на изпитвания  химикал  в почвата  във времето  през фазата  на поглъщане , 
могат  да се използват  следните  модели , напр . (67) (79): 
C s ¼ C 0 ðe –k 0 t Þ [уравнение  5] ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1456
 
където  
C s = концентрация  на химикала  в почвата  [g kg  -1 влажно  или сухо  тегло ] 
k 0 = константата  на скоростта  на разграждане  в почвата  [дни  -1 ] 
C 0 = начална  концентрация  на химикала  в почвата  [g kg  -1 влажно  или сухо  
тегло ] 
C a ¼ k s 
k e Ä k 0 Ü ðe –k 0 t Ä e –k e t Þ 0 < t < t  c [уравнение  6] 
C a ¼ k s 
k e Ä k 0 Ü e –k 0 tc Ä e –k e tc ä e ÄkðtÄtcÞ t > t  c [уравнение  7] 
където  
C a = концентрация  на химикала  в червеи  [g kg  -1 влажно  или сухо  тегло ] 
k s = константа  на скоростта  на поглъщане  в тъкани  [g почва  kg -1 червеи  
дни  -1 ] 
k 0 = константата  на скоростта  на разграждане  [дни  -1 ] 
k e = константата  на скоростта  на елиминиране  [дни  -1 ] 
t c = време  в края  на фазата  на поглъщане . 
Когато  е достигнато  стационарно  състояние  по време  на фазата  на 
поглъщане  (т.е., t = ∞), уравнение  1 
C a ¼ k s 
k e Ü C s ð1 Ä e –k e t Þ 0 < t < t  c [уравнение  1] 
се свежда  до: 
C a ¼ k s 
k e Ü C s 
или до 
C a=C s ¼ k s=k e ¼ BAF  K [уравнение  8] 
Тогава  k s /k e x C  s е приближение  на концентрацията  на изпитвания  обект  в 
тъканите  на червеите  при стационарно  състояние  (C a,ss ). 
Коефициентът  на акумулация  биота -почва  (BSAF) може  да се изчисли , 
както  следва : 
BSAF ¼ BAF  K ä f oc 
f lip [уравнение  9] 
където  f oc е частта  органичен  въглерод  в почвата , а f lip е частта  липиди  в 
червеите , като за предпочитане  и двете  стойности  се определят  върху  
проби , взети  от изпитването , и се базират  съответно  или на сухото , или 
на влажното  тегло . 
Кинетиката  на елиминирането  може  да се моделира , като се използват  
данни  от фазата  на елиминиране  и като се приложи  следното  уравнение , 
описващо  модела , както  и нелинеен  компютърен  метод  за оценка  на парам­  
етрите . Ако графиката  на данните  като функция  от времето  сочи  постоянно  
експоненциално  намаляване  на концентрацията  на изпитвания  обект  в 
животните , за описване  на развитието  на елиминирането  във времето  
може  да се използва  еднокамерен  модел  (уравнение  9): 
C a ðtÞ ¼ C a;ss Ü e –k e t (уравнение  10) ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1457
 
Процесът  на елиминиране  понякога  изглежда  двуфазов , с бързо  намаляване  
на C a през началните  фази , което , в късните  фази  на елиминирането , се 
променя  към по-бавно  елиминиране  от изпитвани  обекти , напр . (27) (68). 
Двете  фази  могат  да се тълкуват  чрез предположението , че в организма  има 
две камери , от които  изпитваният  химикал  се елиминира  с различна  
скорост . В такива  случаи  следва  да се проучи  специализираната  литература , 
напр . (38) (39) (40) (78).  
Като  се използват  уравненията  на модела , посочени  по-горе, могат  
наведнъж  да се изчислят  кинетичните  параметри  (k  s и k e ), като се 
приложи  кинетичен  модел  от първи  порядък  едновременно  към всички  
данни  — към тези от фазата  на поглъщане  и към тези от фазата  на 
елиминиране . За описание  на метод , позволяващ  подобно  комбинирано  
изчисляване  на константите  на скоростта  на поглъщане  и елиминиране  
може  да се консултират  източниците  (41), (73) и (70). 
C a ¼ " 
K s 
K e · C s ð1 Ä e –k e t Þ Ü ðm ¼ 1Þ # 
þ " 
K s 
k e Ü C s ðe ÄK e ðtÄt c Þ Ä e –K e t Þ Ü ðm ¼ 2Þ # 
[уравнение  11] 
Забележка : Когато  параметрите  за поглъщането  и елиминирането  се 
оценяват  едновременно  въз основа  на комбинираните  данни  
за поглъщането  и елиминирането , „m“, фигуриращо  в 
уравнение  11, е дескриптор , който  позволява  на компютърната  
програма  да приписва  на членовете  на уравнението  набори  от 
данни  за съответната  фаза  и да извършва  коректно  оценката  (m 
= 1 за фазата  на поглъщане ; m = 2 за фазата  на елиминиране ). 
Въпреки  това, тези уравнения , описващи  модела , следва  да се използват  
внимателно , по-специално  когато  по време  на изпитването  се променя  бион­  
аличността  на изпитвания  химикал  или когато  по време  на изпитването  
настъпва  (био)разграждане  (вж. напр . (79).  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1458
 
Допълнение  3 
ПРИМЕРИ  ЗА ГРАФИЦИ  НА ИЗПИТВАНИЯ  ЗА БИОАКУМУЛАЦИЯ  В 
ПОЧВАТА  
Изпитване  със земни  червеи  
а) Фаза  на поглъщане  с 8 дати  за вземане  на проби , използвани  за изчис­  
ляване  на кинетичните  параметри  
Ден Дейност  
– 6 Подготвяне  на приготвената  почва  за 48 h 
– 4 Добавяне  на разтвор  на изпитвания  химикал  в част от 
почвата ; изпаряване  на разтворителя , ако има такъв ; 
смесване  на съставките  на почвата ; разпределяне  на 
почвата  по съдовете  за изпитване ; уравновесяване  при 
условията  на изпитването  в продължение  на 4 дни (3 
седмици  при почва  с добавен  метал ). 
– 3 — – 1 Отделяне  на изпитваните  организми  от средата  за отглеждане  
за аклиматизиране ; приготвяне  и овлажняване  на съставките  
на почвата . 
0 Измерване  на температура  и рН на почвата ; вземане  на 
проби  почва  от третираните  съдове  и съдовете  за контрол  
на разтворителя  за определяне  на концентрацията  на 
изпитвания  химикал ; добавяне  на дажбата  храна ; претегляне  
и разпределение  на червеите  в изпитвателните  съдове  на 
случаен  принцип ; отделяне  на достатъчно  по-малки  проби  
червеи  за определяне  на стойностите  на аналитичния  фон, 
на сухото  и влажното  тегло  и на съдържанието  на липиди ; 
претегляне  на всички  изпитвателни  съдове  за проверка  на 
влажността  на почвата ; проверка  на подаването  на въздух , 
ако се използва  затворена  система . 
1 Проверка  на подаването  на въздух , записване  на поведението  
на червеите  и на стойността  на температурата ; вземане  на 
проби  почва  и червеи  за определяне  на концентрацията  на 
изпитвания  обект . 
2 Същото  като ден 1. 
3 Проверка  на подаването  на въздух , на поведението  на 
червеите  и на стойността  на температурата . 
4 Същото  като ден 1. 
5 – 6 Същото  като ден 3. 
7 Същото  като ден 1; добавяне  на дажбата  храна ; проверка  на 
влажността  на почвата  чрез повторно  претегляне  на изпитв­  
ателните  съдове , компенсиране  на загубите  на вода  от 
изпаряване . 
8 – 9 Същото  като ден 3. 
10 Същото  като ден 1. 
11 – 13 Същото  като ден 3. 
14 Същото  като ден 1; добавяне  на дажбата  храна ; проверка  на 
влажността  на почвата  чрез повторно  претегляне  на изпитв­  
ателните  съдове , компенсиране  на загубите  на вода  от 
изпаряване . 
15 – 16 Същото  като ден 3. 
17 Същото  като ден 1. 
18 – 20 Същото  като ден 3. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1459
 
Ден Дейност  
21 Същото  като ден 1; измерване  на температура  и рН на 
почвата ; проверка  на влажността  на почвата  чрез повторно  
претегляне  на изпитвателните  съдове ; край  на фазата  на 
поглъщане ; прехвърляне  на червеите  от оставащите  
подложени  на експозиция  повторения  в съдове  с чиста  
почва  за фазата  на елиминиране  (без изхвърляне  на 
чревното  съдържимо ); вземане  на проби  от почва  и червеи  
от съдовете  за контрол  на разтворителя . 
Дейностите  във връзка  с предекспозицията  (фаза  на уравнов­  
есяване ) следва  да се планират , като се вземат  предвид  
свойствата  на изпитвания  химикал . 
Дейностите , описани  за ден 3, следва  да се извършват  
ежедневно  (най-малкото  в работни  дни). 
б) Фаза  на елиминиране  
Ден Дейност  
– 6 Приготвяне  и овлажняване  на съставките  на почвата ; подг­  
отвяне  на приготвената  почва  в продължение  на 48 h. 
– 4 Смесване  на съставките  на почвата ; разпределяне  на почвата  
по изпитвателните  съдове ; инкубиране  при условията  на 
изпитването  в продължение  на 4 дни. 
0 (край  на фазата  
на поглъщане ) Измерване  на температура  и рН на почвата ; претегляне  и 
разпределение  на червеите  в изпитвателните  съдове  на 
случаен  принцип ; добавяне  на дажбата  храна ; прехвърляне  
на червеите  от оставащите  подложени  на експозиция  
повторения  в съдове  с чиста  почва ; вземане  на проби  почва  
и червеи  след  4—6 часа за определяне  на концентрация  на 
изпитвания  химикал . 
1 Проверка  на подаването  на въздух , записване  на поведението  
на червеите  и на стойността  на температурата ; вземане  на 
проби  почва  и червеи  за определяне  на концентрация  на 
изпитвания  химикал . 
2 Същото  като ден 1. 
3 Проверка  на подаването  на въздух , на поведението  на 
червеите  и на стойността  на температурата . 
4 Същото  като ден 1. 
5 – 6 Същото  като ден 3. 
7 Същото  като ден 1; добавяне  на дажбата  храна ; проверка  на 
влажността  на почвата  чрез повторно  претегляне  на изпитв­  
ателните  съдове , компенсиране  на загубите  на вода  от 
изпаряване . 
8 – 9 Същото  като ден 3. 
10 Същото  като ден 1. 
11 – 13 Същото  като ден 3. 
14 Същото  като ден 1; добавяне  на дажбата  храна ; проверка  на 
влажността  на почвата  чрез повторно  претегляне  на изпитв­  
ателните  съдове , компенсиране  на загубите  на вода  от 
изпаряване . 
15 – 16 Същото  като ден 3. 
17 Същото  като ден 1. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1460
 
Ден Дейност  
18 – 20 Същото  като ден 3. 
21 Същото  като ден 1; измерване  на температура  и рН на 
почвата ; проверка  на влажността  на почвата  чрез повторно  
претегляне  на изпитвателните  съдове ; вземане  на проби  от 
почва  и червеи  от съдовете  за контрол  на разтворителя . 
Приготвянето  на почвата  преди  началото  на фазата  на 
елиминиране  се извършва  по същия  начин , по който  се 
извършва  преди  фазата  на поглъщане . 
Дейностите , описани  за ден 3, следва  да се извършват  
ежедневно  (най-малкото  в работни  дни). 
Изпитване  с енхитреиди  
а) Фаза  на поглъщане  с 8 дати  за вземане  на проби , използвани  за изчис­  
ляване  на кинетичните  параметри  
Ден Дейност  
– 6 Подготвяне  на приготвената  почва  в продължение  на 48 h. 
– 4 Добавяне  на разтвор  на изпитвания  химикал  в част от 
почвата ; изпаряване  на разтворителя , ако има такъв ; 
смесване  на съставките  на почвата ; разпределяне  на 
почвата  по изпитвателните  съдове ; уравновесяване  при 
условията  на изпитването  в продължение  на 4 дни (3 
седмици  при почва  с добавен  метал ). 
– 3 — – 1 Отделяне  на опитните  организми  от средата  за отглеждане  за 
аклиматизиране ; приготвяне  и овлажняване  на съставките  на 
почвата . 
0 Измерване  на температура  и рН на почвата ; вземане  на 
проби  почва  от третираните  съдове  и съдовете  за контрол  
на разтворителя  за определяне  на концентрацията  на 
изпитвания  химикал ; добавяне  на дажбата  храна  към 
почвата ; претегляне  и разпределение  на червеите  в изпитват­  
елните  съдове  на случаен  принцип ; отделяне  на достатъчно  
по-малки  проби  червеи  за определяне  на стойностите  на 
аналитичния  фон, на сухото  и влажното  тегло  и на 
съдържанието  на липиди ; претегляне  на всички  изпитвателни  
съдове  за контрол  на влажността  на почвата ; проверка  на 
подаването  на въздух , ако се използва  затворена  система . 
1 Проверка  на подаването  на въздух , записване  на поведението  
на червеите  и на стойността  на температурата ; вземане  на 
проби  почва  и червеи  за определяне  на концентрацията  на 
изпитвания  обект . 
2 Същото  като ден 1. 
3 Проверка  на подаването  на въздух , на поведението  на 
червеите  и на стойността  на температурата . 
4 Същото  като ден 1. 
5 – 6 Същото  като ден 3. 
7 Същото  като ден 1; добавяне  на дажбата  храна  към почвата ; 
проверка  на влажността  на почвата  чрез повторно  претегляне  
на изпитвателните  съдове , компенсиране  на загубите  на вода  
от изпаряване . 
9 Същото  като ден 1. 
10 Същото  като ден 3. ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1461
 
Ден Дейност  
11 Същото  като ден 1. 
12 – 13 Същото  като ден 3. 
14 Същото  като ден 1; добавяне  на дажбата  храна  към почвата ; 
измерване  на температурата  и рН на почвата ; проверка  на 
влажността  на почвата  чрез повторно  претегляне  на изпитв­  
ателните  съдове ; край  на фазата  на поглъщане ; прехвърляне  
на червеите  от оставащите  подложени  на експозиция  
повторения  в съдове  с чиста  почва  за фазата  на елиминиране  
(без изхвърляне  на чревното  съдържимо ); вземане  на проби  
от почва  и червеи  от съдовете  за контрол  на разтворителя . 
Дейностите  във връзка  с предекспозицията  (фаза  на уравнов­  
есяване ) следва  да се планират , като се вземат  предвид  
свойствата  на изпитвания  химикал . 
Дейностите , описани  за ден 3, следва  да се извършват  
ежедневно  (най-малкото  в работни  дни). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1462
 
Допълнение  4 
Изкуствена  почва  — препоръки  за проготвяне  и съхранение  
Тъй като естествените  почви  от конкретен  източник  могат  да не бъдат  
достъпни  през цялата  година , а съдържащите  се в тях организми , както  и 
наличието  на микрозамърсители , могат  да повлияят  на изпитването , за 
употреба  в настоящото  изпитване  се препоръчва  изкуствен  субстрат  — 
изкуствената  почва , приготвена  съгласно  глава  В.8 от настоящото  прил­  
ожение  „Токсичност  за земни  червеи “ (48). В нея могат  да живеят , растат  
и се размножават  редица  видове , а освен  това се осигуряват  максимална  
стандартизация  и вътрешнолабораторна  и междулабораторна  съпоставимост  
на условията  на изпитване  и отглеждане . 
Съставки  на почвата  
Торф  10 % Торфен  мъх в съответствие  с Насоки  на 
ОИСР  207 (48). 
Кварцов  пясък  70 % Промишлен  кварцов  пясък  (изсушен  на 
въздух ); размер  на зърната : > 50 % от 
частиците  следва  да бъдат  в интервала  
50—200 μm, но всички  частици  трябва  
да бъдат  ≤ 2 mm. 
Каолин  20 % Съдържание  на каолинит  ≥ 30 %. 
Калциев  карбонат  ≤ 1 % CaCO  3 на прах , химически  чист . 
Възможно  е също  съдържанието  на органичен  въглерод  на изкуствената  
почва  да бъде  намалено , напр . чрез понижаване  на съдържанието  на торф  
до 4—5 % от сухата  почва , и съответно  да се повиши  съдържанието  на 
пясък . С подобно  намаляване  на съдържанието  на органичен  въглерод  
може  да се намали  и способността  за адсорбция  на изпитвания  химикал  в 
почвата  (органичен  въглерод ), и да се увеличи  наличният  изпитван  химикал  
за червеите  (74). Беше  показано , че Enchytraeus albidus  и Eisenia fetida  могат  
да изпълнят  критериите  за валидност  по отношение  на възпроизводството , 
когато  се изпитват  в естествени  почви  с по-ниско  съдържание  на органичен  
въглерод , напр . 2,7 % (33), (61), като беше  експериментално  установено , че 
това може  да се постигне  и в изкуствена  почва  със съдържание  на торф  
5 %.  
Приготвяне  
Сухите  съставки  на почвата  се смесват  старателно  (напр . в голямо  
лабораторно  устройство  за смесване ). Това  следва  да се извърши  около  
една  седмица  преди  началото  на изпитването . Смесените  сухи  съставки  на 
почвата  се навлажняват  с дейонизирана  вода  най-малко  48 h преди  прил­  
агането  на изпитвания  обект , за да се уравновеси /стабилизира  киселин­  
ността . За определяне  на рН се използва  смес  от почва  и разтвор  на 1 M 
KCl в съотношение  1:5. Ако стойността  на рН не е в желания  интервал  (6,0 
± 0,5), в почвата  се добавя  достатъчно  количество  CaCO  3 , или се приготвя  
нова  партида  почва . 
Максималната  способност  за задържане  на вода  (СЗВ) на изкуствената  
почва  се определя  в съответствие  с ISO 11268-2 (35). Най-малко  два дни 
преди  началото  на изпитването  сухата  изкуствена  почва  се навлажнява  чрез 
добавяне  на дейонизирана  или възстановена  вода , за получаване  на 
приблизително  половината  от крайната  влажност . Крайната  влажност  
следва  да бъде  40—60 % от максималната  СЗВ. В началото  на изпитването  
предварително  навлажнената  почва  се разделя  на толкова  партиди , колкото  
са използваните  в изпитването  концентрации  и контроли , и влажността  се 
коригира  до 40—60 % от максималната  СЗВ, като се използва  разтвор  на 
изпитвания  обект  и/или като се добавя  дейонизирана  или възстановена  вода . 
Съдържанието  на влага  се измерва  в началото  и в края  на изпитването  (при 
105 °С) То трябва  да е оптимално  по отношение  на изискванията  на 
съответния  вид (съдържанието  на влага  може  също  да се провери  по 
следния  начин : когато  малко  количество  почва  се стисне  леко  в ръка , 
трябва  между  пръстите  да се появят  капчици  вода ). ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1463
 
Съхранение  
Сухите  съставки  на изкуствената  почва  може  да се съхраняват  при стайна  
температура  докато  не бъдат  използвани . Приготвената , предварително  
навлажнена  почва  може  да се съхранява  на студено  до три дни, преди  в 
нея да се добави  изпитваният  химикал ; следва  да се внимава  да се сведе  до 
минимум  изпаряването  на водата . Почва  с добавен  изпитван  обект  следва  да 
се използва  незабавно , освен  ако има информация , че конкретна  почва  може  
да се съхранява , без да се наруши  токсичността  или бионаличността  на 
изпитвания  обект . Проби  от почва  с добавен  химикал  могат  да се 
съхраняват  докато  бъдат  анализирани  при условията , препоръчани  за 
конкретния  изпитван  обект . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1464
 
Допълнение  5 
Видове  сухоземни  олигохети , които  се препоръчват  при изпитвания  за 
биоакумулация  от почвата  
Земни  червеи  
Препоръчваните  видове  за изпитването  са Eisenia fetida  (Savigny 1826), 
принадлежащи  към семейство  Lumbricidae. От 1972 г. той е разделен  на 
два подвида  (Eisenia fetida  and  Eisenia andrei  (10). Според  Jaenike (36), те 
са истински , различни  видове . Eisenia fetida  се разпознава  лесно  по светлите  
жълти  ивици  между  прешлените , докато  Eisenia andrei  има равномерен  
тъмночервен  цвят . Произходът  им вероятно  е от района  на Черно  море , 
но днес  те са разпространени  в целия  свят, по-специално  в антропогенно  
изменените  местообитания , като напр . купчините  компост . И двата  вида  
могат  да се използват  в екотоксикологични  изпитвания , както  и в 
изпитвания  за биоакумулация . 
Eisenia fetida  и Eisenia andrei  са достъпни  в търговската  мрежа , напр . като 
стръв  за риба . В сравнение  с други  земни  червеи  от семейство  Lumbricidae, 
те имат  по-къс жизнен  цикъл , като достигат  зрялост  в рамките  на около  
2—3 месеца  (при стайна  температура ). Оптималната  температура  за тях е 
приблизително  20—24 °C. Те предпочитат  сравнително  влажни  субстрати  с 
почти  неутрално  рН и високо  съдържание  на органичен  материал . Тъй като 
тези видове  са били  широко  използвани  в стандартни  екотоксикологични  
изпитвания  в продължение  на около  25 години , тяхното  отглеждане  е добре  
установено  (48) (77).  
И двата  вида  могат  да бъдат  отглеждани  върху  най-различни  животински  
отпадъци . Препоръчваната  в ISO (35) среда  за отглеждане  е смес  50:50 от 
конски  или говежди  тор и торф . Средата  трябва  да има стойност  на рН от 
около  6 до 7 (регулирана  с калциев  карбонат ) и ниска  йонна  проводимост  
(под 6 mS/cm или концентрация  на соли  по-ниска  от 0,5 %) и не бива  да е 
прекомерно  замърсена  с амоняк  или животинска  урина . Може  също  да се 
използва  и достъпна  в търговската  мрежа  градинска  почва , несъдържаща  
добавки , или изкуствена  почва  в съответствие  с ОИСР  (48), или смес  от 
двете  в съотношение  50:50. Субстратът  трябва  да бъде  влажен , но не 
прекалено  мокър . Подходящи  са кутии  за отглеждане  с вместимост  
10—50 литра . 
За да се получат  червеи  със стандартна  възраст  и маса , най-добре  е 
отглеждането  да се започне  от пашкули . За целта  възрастни  червеи  се 
добавят  към кутиите  за отглеждане , съдържащи  пресен  субстрат , за да 
бъдат  получени  пашкули . Практическият  опит  показва , че популация  с 
гъстота  около  100 червея  на kg субстрат  (влажно  тегло ) дава добри  
стойности  на възпроизводство . След  28 дни възрастните  червеи  се 
отстраняват . Излюпените  от пашкулите  земни  червеи  се използват  за 
изпитване , когато  достигнат  до зрялост , след  най-малко  2 месеца , но по- 
малко  от 12 месеца . 
Червеите  от описаните  по-горе видове  могат  да се смятат  за здрави , ако се 
движат  в субстрата , не се опитват  да го напускат  и се възпроизвеждат  
непрекъснато . Много  бавното  движение  или жълт  заден  край  (при Eisenia 
fetida ) са указание  за изтощаване  на субстрата . В този случай  се препоръчва  
приготвянето  на свеж  субстрат  или намаляване  на броя  на животни  в кутия . 
Допълнителна  подбрана  литература  
Gerard BM (1964). Synopsis of the British fauna. № 6 Lumbricidae. Linnean 
Soc. London, 6: 1-58.  
Graff O (1953). Die Regenwürmer Deutschlands. Schr. Forsch. Anst. 
Landwirtsch. 7: 1-81.  
Römbke J, Egeler P, Füll C (1997). Literaturstudie über Bioakkumulationstests 
mit Oligochaeten im terrestrischen Medium. Bericht für das UBA F + E 206 03 
909, 86 S.  
Rundgren S (1977). Seasonality of emergence in lumbricids in southern Sweden. 
Oikos 28: 49-55.  
Satchell JE (1955). Some aspects of earthworm ecology. Soil Zoology (Kevan): 
180-201.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1465
 
Sims RW and Gerard BM (1985). A synopsis of the earthworms. Linnean Soc. 
London 31: 1-171.  
Tomlin AD (1984). The earthworm bait market in North America. In: Earthworm 
Ecology - from Darwin to vermiculture. Satchell, J.E. (ed.), Chapman & Hall, 
London. 331-338 pp.  
Енхитреиди  
Препоръчаният  за изпитването  вид е Enchytraeus albidus  Henle 1837 ( бял 
червей ). Enchytraeus albidus  е един  от най-големите  (до 15 mm) видове  от 
семейство  прешленести  олигохети  Enchytraeidae и е разпространен  в цял 
свят, напр . (8).  Enchytraeus albidus  се среща  в морски , сладководни  и 
сухоземни  местообитания , главно  в разлагаща  се органична  материя  
(водорасли , компост ) и рядко  по ливадите  (42). Широката  екологична  
толерантност  и някои  морфологични  изменения  са белег , че във вида  
може  да има различни  породи . 
Enchytraeus albidus  е достъпен  в търговската  мрежа  и се продава  за храна  за 
риби . Следва  да се провери  дали  отгледаните  екземпляри  не са замърсени  
от други , обикновено  по-дребни  видове  (60). Ако е налице  заразяване , 
всички  червеи  следва  да се измият  с вода  в стъкло  на Петри . След  това 
се избират  едри  възрастни  екземпляри  от Enchytraeus albidus  (използва  се 
стереомикроскоп ), за започване  на нова  култура . Всички  други  червеи  се 
отстраняват . Жизненият  цикъл  при този вид е къс, тъй като той достига  до 
зрелост  между  33 дни (при 18 °C) и 74 (при 12 °С). В изпитвания  следва  да 
се използват  само  култури , които  са били  държани  в лаборатория  в продъ­  
лжение  на най-малко  5 седмици  (едно  поколение ) без проблеми . 
Други  видове  от рода  Enchytraeus  също  са подходящи , по-специално  
Enchytraeus luxuriosus.  Този  вид е истински  почвен  обитател , който  
наскоро  беше  описан  в (65). Ако се използват  други  видове  от род Enchyt­
raeus , те следва  да бъдат  ясно  определени  и да се отчетат  причините  за 
избора  им. 
Enchytraeus crypticus  (Westheide & Graefe 1992) е вид, принадлежащ  към 
същата  група , към която  спада  и Enchytraeus luxuriosus . Съществуването  
му в природата  не е било  установено  със сигурност , видът  е бил описан  
само  в култури  на червеи  и в купчини  компост  (Römbke 2003). Поради  това 
присъщите  му изисквания  по отношение  на средата  не са известни . Въпреки  
това, неотдавнашни  лабораторни  изследвания  с разнообразни  естествени  
почви  са потвърдили , че този вид има широка  толерантност  към свойствата  
на почвата  — такива  като pH и текстурата  (Jänsch et al., 2005). През  
последните  години  този вид често  е бил използван  в изследванията  за 
екотоксичност  поради  това, че лесно  се поддава  на отглеждане  и 
изпитване  (напр . Kuperman et al. 2003). Независимо  от това, видът  е 
дребен  (3—12 mm; средно  7 mm (Westheide & Müller 1996), което  прави  
боравенето  с него  по-сложно , отколкото  с Enchytraeus albidus . Когато  
този вид се използва  вместо  Enchytraeus albidus , размерът  на изпитвателния  
съд може  да е по-малък , без това да е необходимо . Освен  това следва  да се 
има предвид , че видът  се възпроизвежда  много  бързо , времето  за достигане  
на зрялост  е по-малко  от 20 дни при 20 ± 2 ° С (Achazi et al. 1999) и дори  
по-кратко  при по-висока  температура . 
Енхитреидите  от вида  Enchytraeus albidus  (както  и други  видове  Enchyt­
raeus ) могат  да бъдат  развъждани  в големи  пластмасови  кутии  (напр . 30 × 
60 × 10 cm, или 20 × 12 × 8 cm, които  са подходящи  за получаване  на 
култура  от червеи  от по-малък  размер ), които  се пълнят  със смес  от 
изкуствена  почва  и незамърсена  градинска  почва  без добавки , достъпна  в 
търговската  мрежа . Употребата  на компост  следва  да се избягва , тъй като 
той може  да съдържа  токсични  химикали , като тежки  метали . Преди  
употреба  фауната  следва  да бъдат  елиминирана  от почвата  за развъждане  
чрез трикратно  дълбоко  замразяване . Може  също  така да се използва  чиста  
изкуствена  почва , но темповете  на размножаване  може  да се окажат  по- 
ниски  в сравнение  с онези , които  биха  се получили  при смесен  субстрат . 
Субстратът  трябва  да има рН от 6,0 ± 0,5. Културата  се съхранява  в 
инкубатор  при температура  15 ± 2 °C без светлина . При всички  случаи  
температура , по-висока  от 23 °C, трябва  да се избягва . Изкуствената /ест­ 
ествената  почва  трябва  да бъде  влажна , но не мокра . При леко  стискане  в 
ръка  на почвата  трябва  да се появяват  само  малки  капки  вода . При всички  
случаи , трябва  да се избягва  отсъствие  на кислород  (напр . ако се използва  
капак , броят  на отворите  в капака  трябва  да бъде  достатъчно  голям , за да 
осигури  достатъчен  обмен  на въздух ). Почвата  за развъждане  трябва  да се 
аерира , като внимателно  се размесва  веднъж  седмично . ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1466
 
Червеите  следва  да бъдат  хранени  поне  веднъж  седмично  ad libitum  със 
сплескани  овесени  ядки , които  са поставени  във вдлъбнатина  на 
повърхността  на почвата  и покрити  с почва . Ако храната  от последното  
хранене  остава  в контейнера , количеството  храна , което  се дава, следва  да 
бъде  съответно  коригирано . Ако по оставащата  храна  се появят  гъбички , тя 
трябва  да се смени  с нова  порция  сплескани  овесени  ядки . С цел да се 
стимулира  възпроизводството , сплесканите  овесени  ядки  могат  да бъдат  
допълвани  на всеки  две седмици  с протеин  на прах  с добавка  на 
витамини , който  може  да бъде  намерен  в търговската  мрежа . След  три 
месеца , животните  трябва  да бъдат  прехвърлени  в прясно  приготвен  
субстрат  за отглеждане  или развъждане . Овесените  ядки , които  трябва  да 
се съхраняват  в запечатани  съдове , следва  да се обработват  в автоклав  или 
да се нагряват  преди  употреба  с цел да се избегнат  инфекции  с брашнени  
акари  (напр . Glyzyphagus  sp., Astigmata, Acarina) или хищни  акари  (напр . 
Hypoaspis (cosmolaelaps) miles , Gamasida, Acarina). След  дезинфекция , 
храната  се смила , така че да може  да бъде  лесно  разпръсната  по 
повърхността  на почвата . Друг  възможен  източник  на храна  е мая за хляб  
или храна  за риби  TetraMin  ® . 
Като  цяло  условията  за отглеждане  са достатъчно  добри , ако червеите  не се 
опитват  да напуснат  субстрата , движат  се бързо  в почвата , имат  лъскава  
външна  повърхност  без частици  почва , прилепнали  към нея, имат  повече  
или по-малко  изявен  белезникав  цвят , и ако се наблюдават  червеи  от 
различни  възрасти . Червеите  могат  да се считат  за здрави , ако се 
възпроизвеждат  непрекъснато . 
Допълнителна  подбрана  литература  
Achazi RK, Fröhlich E, Henneken M, Pilz C (1999). The effect of soil from 
former irrigation fields and of sewage sludge on dispersal activity and colonizing 
success of the annelid  Enchytraeus crypticus  (Enchytraeidae, Oligochaeta). 
Newsletter on Enchytraeidae 6: 117-126.  
Jänsch S, Amorim MJB, Römbke J (2005). Identification of the ecological 
requirements of important terrestrial ecotoxicological test species. Environ. 
Reviews 13: 51-83.  
Kuperman RG, Checkai RT, Simini M, Phillips CT, Kolakowski JE, Kurnas CW, 
Sunahara GI (2003). Survival and reproduction of  Enchytraeus crypticus  (Oli­
gochaeta, Enchytraeidae) in a natural sandy loam soil amended with the nitro-heterocyclic explosives RDX and HMX. Pedobiologia 47: 651-656.
 
Römbke J (2003). Ecotoxicological laboratory tests with enchytraeids: A review. 
Pedobiologia 47: 607-616.  
Westheide W and Graefe U (1992). Two new terrestrial  Enchytraeus  species 
(Oligochaeta, Annelida). J. Nat. Hist. 26: 479 – 488.  
Westheide W and Müller MC (1996). Cinematographic documentation of 
enchytraeid morphology and reproductive biology. Hydrobiologia 334: 263-267.  ▼M4 2008R0440 — BG — 24.08.2014 — 005.001 — 1467