DOI: 10.26071/c5d69a5a-2e91
title: Microplastics in American lobster (Homarus americanus) and Mussel Species in Coastal Southwestern New Brunswick, Canada
title: Microplastiques dans le Homard d’Amérique (Homarus americanus) et dans des espèces de moules dans la zone côtière du sud-ouest du Nouveau-Brunswick, au Canada

description: This dataset consists of data collected by the Passamaquoddy Recognition Group Inc. (PRGI), which is an Indigenous not-for-profit organization led by the Peskotomuhkati Nation at Skutik. This project is funded by the Department of Fisheries and Oceans (DFO), Coastal Environmental Baseline Program (CEBP). Data will include samples collected from 2020-2027 and represents field sampling data as well as laboratory and Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FTIR) data associated with the sampling of American lobster (Homarus americanus) and Northern Horse mussel (Modiolus modiolus) for the purpose of studying the presence and abundance of microplastics and micro-debris in this species.

Sampling: Samples were collected from the Port of Saint John region, Passamaquoddy Bay and around Grand Manan Island in New Brunswick. Samples were collected using standard lobster traps with PRGI technical staff present for all sampling activity. Retained lobsters were transported back to laboratory spaces in coolers and immediately euthanized via freezing.

Laboratory Analysis: Once lobsters are euthanized and dissected, digestion of organic tissue, and filtration begin. Digestive tracts and muscle tissues are dissected from the lobster, and whole mussels are placed in a 10% KOH solution. Samples are then transferred into a warming oven at 50 degrees Celsius for at least 24 hours. This process allows for the digestion of most organic material. Large undigested remains are passed through a sieve and analyzed visually by technicians under a dissection microscope. Any potential microplastics identified at this stage are isolated on a filter paper and stored on a petri slide. The remaining tissue is filtered using a 0.8 µm pore size filter and a vacuum pump. As with larger debris, these filters are also analyzed visually under a dissection microscope. Any potential microplastics are marked and numbered for FTIR identification. Dissection, digestion, and visual analysis are conducted in a lab space, making use of biosafety cabinets, and fume hoods to aid in the reduction of microplastic contamination of samples, whenever possible. All implements used are triple rinsed with filtered (0.8 µm or Milli-Q) water, and samples are covered when not being handled to reduce potential contamination. Environmental blanks, H20 blanks, and KOH blanks are taken throughout the process for quality control. As of 2022, PRGI conducts laboratory analysis in a dedicated in-house clean lab, minimizing exposure to contaminants by following cleaning procedures and low plastics laboratory dress code.

Once visual analysis is completed, petri slides with marked and numbered potential plastics are sent to Western Surface Science laboratory at the University of Western Ontario for FTIR analysis. This analysis indicates the chemical composition of identified particles and indicates if such particles are made of plastic or of other materials.
description: Ce jeu de données comprend des données collectées par le Passamaquoddy Recognition Group Inc. (PRGI), une organisation autochtone à but non lucratif dirigée par la Nation Peskotomuhkati de Skutik. Ce projet est financé par le ministère Pêches et Océans Canada (MPO), Programme sur les données environnementales côtières de référence (PDECR). Les données incluront des échantillons collectés entre 2020 et 2027 et représentent des données d’échantillonnage sur le terrain ainsi que des données de laboratoire et de spectroscopie infrarouge à transformée de Fourier (FTIR) associées à l’échantillonnage du homard américain (Homarus americanus) et de la moule chevaline du Nord (Modiolus modiolus), dans le but d’étudier la présence et l’abondance de microplastiques et de microdébris chez ces espèces.

Échantillonnage : Des échantillons ont été prélevés dans la région du port de Saint John, dans la baie de Passamaquoddy et autour de l’île Grand Manan au Nouveau-Brunswick. Les échantillons ont été collectés à l'aide de pièges à homards standard, et le personnel technique du PRGI était présent lors des activités d'échantillonnage. Les homards conservés ont été transportés dans des espaces de laboratoire dans des glacières, puis immédiatement euthanasiés par congélation.

Analyse en laboratoire : Une fois les homards euthanasiés et disséqués, la digestion de la matière organique, et la filtration commencent. Les tubes digestifs et les tissus musculaires sont prélevés chez le homard, et les moules entières sont placées dans une solution de KOH à 10 %. Les échantillons sont ensuite transférés dans un four chauffé à 50 degrés Celsius pendant au moins 24 heures. Cette étape permet la digestion de la plupart de la matière organique. Les restes non digérés sont passés au tamis et analysés visuellement par des techniciens sous un microscope de dissection. Tout microplastique potentiel identifié à ce stade est isolé sur un papier filtre et déposé sur une lame de Petri. Le matériau restant est filtré à l'aide d'un filtre de taille de pores de 0.8 micromètre et d'une pompe à vide. Les filtres, tout comme les débris plus gros, sont également analysés visuellement sous un microscope de dissection. Tout microplastique potentiel est marqué et numéroté pour l'identification par FTIR. La dissection, la digestion et l'analyse visuelle sont effectuées dans un espace de laboratoire, en utilisant des hottes de sécurité biologique et des hottes de fumée pour minimiser la contamination par les microplastiques des échantillons, lorsque cela est possible. Tous les instruments utilisés sont rincés trois fois avec de l'eau filtrée (0.8 micromètre ou Milli-Q), et les échantillons sont couverts lorsqu'ils ne sont pas manipulés pour réduire les risques de contamination. Des blancs environnementaux, des blancs H2O et des blancs de KOH sont prélevés tout au long du processus pour garantir le contrôle de la qualité. À partir de 2022, le PRGI effectue des analyses en laboratoire dans un laboratoire propre dédié, réduisant ainsi l'exposition aux contaminants grâce à des procédures de nettoyage et à un code vestimentaire à faible teneur en plastique.

Une fois l'analyse visuelle terminée, les lames de Petri marquées et numérotées avec des microplastiques potentiels sont envoyées au laboratoire Western Surface Science de l’Université Western Ontario pour l’analyse FTIR. Cette analyse permet de déterminer la composition chimique des particules identifiées et d’indiquer si celles-ci sont constituées de plastique ou d’autres matériaux.