ALKALINE PROTEASE, METHOD FOR THE PRODUCTION OF HYBRID VECTORS AND GENETICALLY TRANSFORMED MICROORGANISMS

Abstract: A structural gene which codes for the protease subtilisin Carlsberg or its fragments with proteolytic activity or variants with proteolytic activity, including leader sequences thereof, is described. Also described are hybrid plasmids and microorganism strains which contain this structural gene, and a process for separating these microorganism strains from inactive strains. <IMAGE>

Description: &commat; S "Alkalische Protease, Verfahren Zur Herstellung von Hybridvektoren und genetisch transformierte Mikroorganismen'1 Die Erfindung betrifft eine Methode zur Transformation von Mikroorganismen der Gattung Bacillus zu Bildnern der Protease Subtilisin Carlsberg und ihrer Varianten. Beschrieben wird die Herstellung doppelsträngiger Desoxyribonukleinsäuren , die nur fur Subtilisin Carlsberg oder seine Varianten kodieren, Hybridvektoren, die diese isolierten doppelsträngigen Desoxy ribonukleinsäuren zusammen mit dem Strukturgen des Leaderproteins, Start- und Stopcodons in operabler Reihenfolge Rlbosornen-Bindungsstelle und Promotor enthalten, sowie Wirtsorganismen der Gattung Bacillus fur diese Hybridplasmide. Es sind zahlreiche Proteasen bekannt, die von Mikroorganismen* insbesondere Bakterien und Pilzen gebildet werden und durch aktiven Transport aus der Zelle ausgeschleust werden, so dass sie sich im Kulturmedium sammeln. Zahlreiche Enzyme dieser Art finden bereits technische Anwendung in Verfahren, bei denen es darum geht, Proteine abzubauen. Wichtige Anwendungen sind beispielsweise Wasch- und Reinigungsmittel oder auch Tiernahrungsmittel. Die Proteasen werden gängigerweise nach dem pIl- Bereich eingeteilt, in dem sie ihr Wirkungsoptimum zeigen. Man spricht daher von alkalischen, neutralen und sauren Proteasen. Die alkalischen Proteasen sind von besonderer Wichtigkeit in Wasch- und Reinigungsmittel. Dabei wird eine wichtige Gruppe unter dem Oberbegriff Subtilisin zusammengefasst. Diese Bezeichnung leitet sich von Bacillus subtilis ab, da u.a. Stämme dieser Spezies in der Lage sind, Subtilisin. zu erzeugen. In den letzten Jahren ist es gelungen, verschiedene in der Natur vorkommende Arten von Subtilisin voneinander zu trennen, und strukturell aufzuklären (E.L. Smith et al, f--r-Biol. Chem. (1968) 243 (9), 2184. Dabei hat sich gezeigt, dass für die Praxis insbesondere zwei Arten von Subtilisin von Bedeutung sind, nämlich Subtilisin BPN! und Subtilisin Carlsberg. Subtilisin BPN' wird oftmals aus Bacillus amyloliquefaciens gewonnen, wo hingegen sich Subtilisin Carlsberg beispielsweise durch Kultivierung von Stämmen der Spezies Bacillus licheniformis erhalten lässt. Viele Bacillus-Stämme scheiden beide Proteasen oftmals im Gemisch mit neutralen Proteasen (Metallo-Proteasen) aus. Aufgrund der technischen Bedeutung der Enzyme, die für die Protease Subtilisin Carlsberg etwas höher anzusetzen ist als fur die Protease Subtilisin BPN', hat es in der Vergangenheit bereits zahlreiche Versuche gegeben, Stämme aufzufinden, die das eine oder andere Enzym oder deren Mischungen produzieren und die sich zur technischen Gewinnung der Produkte eignen. Verwiesen sei beispielsweise auf die folgenden deutschen Offenlegungsoder Patentschriften: DE 19 40 488, DE 20 18 451, DE 20 44 161, DE 21 07 803, DE 21 21 397 und DE 29 25 427 sowie auf G6 1 263 765, US 3 623 957, US 4 264 738 und EP-A 6 638. Bei den genannten Anmeldungen bzw. Patenten handelt es sich um klassische Mutationsverfahren, bei denen durch die häufige Wiederholung von Mutations- und Selektionsschritten letztendlich Produktionsstämme gewonnen werden, die im Hinblick auf Ausbeute oder Produktqualität optimiert sind. Es ist dem Fachmann bekannt, dass ein deratiger Mutationsprozess statistisch abläuft, so dass kaum zu erwarten ist, dass dabei massgeschneiderte Stämme entstehen, die das objektiv höchstmögliche Leistungsniveau aufweisen. Darüberhinaus können derartige Zuchtstämme auch zu Rückmutationen neigen, d.h., sie verlieren ihre günstigen Eigenschaften, zumindest teilweise und 'verwildern'. Einen wesentlichen Fortschritt hat die Genrekombinationstechnik gebracht (Cohen und Boyer, US 4 237 224). Danach ist es möglich ein Fremdgen in einem Mikroorganismus zur Expression und zur Vermehrung zu bringen, indem man in geeigneter Weise ein Plasmid öffnet, mit der fremden doppelsträngigen Desoxyribonukleinsäure verbindet, erneut zum Ring schliesst und in einen geeigneten Wirtsorganismus einführt. In Anwendung dieser Grundmethode beschreibt die europäische Patentanmeldung 0 13 756 die Isolierung von doppelstrangigen Desoxyribonukleinsäuren, die zum einen für Subtilisin BPN' und zum anderen für neutrale Proteasen (Metallo-Proteasen) codieren. Weiterhin beschrieben wird die Einfügung der doppeisträngigen Desoxyribonukleinsäuren in Vektoren und auch ihre Abwandlung. Wenngleich die gentechnologische Erzeugung und Abwandlung von Hydrolasen (i.e. Proteasen, andere Amydasen, Esterasen u.s.w.) beansprucht wird, so erscheint es doch nicht möglich, die am speziellen Beispiel Subtilisin BPN' aufgezeigten Schritte ohne erfinderisches Zutun auf andere Systeme zu übertragen. Dies gilt umsomehr als nach der Lehre der genannten europäischen Patentanmeldungen die Abtrennung des für die Hydrolase codierenden Gens aus dem Genpool des Ausgangsorganismus über eine markierte Oligonukleotidkette erfolgen soll, wobei diese Oligonukleotidkette einer Teilsequenz der Hydrolase entspricht und in ihren durch den genetischen Code vorgegebenen Variationsmöglichkeiten eingesetzt wird. Für den Fachmann ist hier ein sehr hoher experimenteller Aufwand erforderlich, d.h., es müssen auf synthetischem Wege eine Vielzahl von Oligonukleotidketten in entsprechender Reinheit synthetisiert werden. Darüber hinaus setzt die Arbeitsmethode die Kenntnis der Amino säuresequenz des gewünschten Produktes voraus. Die Erfinder haben sich die Aufgabe gestellt, Mikroorganismenstämme zu schaffen, die in der Lage sind, Subtilisin Carlsberg zu produzieren, wobei unter dem Oberbegriff Subtilisin Carlsberg auch insbesondere eine Variante des Enzyms zu subsumieren ist, die 2 Abwandlungen besitzt. Eine weitere Aufgabe bestand darin, geeignete, in Mikroorganismen der Gattung Bacillus inserierbare und darin stabile Hybridplasmide zu schaffen, die für die Erzeugung und Exkretion von Subtilisin Carlsberg codieren. Schliesslich sollten operable, isolierte, doppelsträngige Desoxyribonukleinsäuren geschaffen werden, die für Subtilisin Carlsberg codieren und die die zur Produktion und Ausschleusung des Enzyms nötigen Nukleotidsequenzen enthalten. Eine weitere Aufgabe der Erfindung bestand darin, bei der Selektion von Carlsberg positiven Mikroorganismen einen im Vergleich zu der in der europäischen Patentanmeldung 0 130 756 beschriebenen Isolationsmethode uber vorgefertigte markierte Oligonukletidsequenzen vereinfachtes immunologisches Detektionsverfahren einzusetzen. Gegenstand der Erfindung sind in einer ersten Ausführungsform isolierte, doppelsträngige Desoxyribonukleinsäuren, bestehend aus - einem Strukturgen, das nur fur ein Polypeptid kodiert - Start- und Stopcodons in operabler Reihenfolge - Ribosomenbindungsstelle - Promotor dadurch gekennzeichnet, dass sie den folgenden Aufbau aufweisen: - Promotor der von der RNA-Polymerase von Mikroorganismen der Gattung Bacillus erkannt wird, - Ribosomenbindungsstelle - Startcodon - Strukturgen, das für Subtilisin Carlsberg oder dessen Teil stücke mit proteolytischer Aktivität oder Varianten mit proteolytischer Aktivität einschliesslich deren Leader-Se quenzen codiert - Stopcodon, wobei an beiden Enden DNA-Sequenzen mit bis zu 400 Basen paaren ohne spezifische Expressionsfähigkeit vorhanden sein können. Die erfindungsgemässen isolierten doppelsträngigen Desoxyribonukleinsauren enthalten die einzelnen Teilsequenzen in operabler Reihenfolge, d.h., dass sie in funktioneller Beziehung zu einander stehen. Darunter ist zu verstehen, dass ein Promotor vorhanden ist, der die Erkennungssequenz für die RNA-Polymerase besitzt und das diesem eine Bindungsstelle für die Ribosomen folgt. Es folgt dann ein in Bacillus operables Startcodon, vorzugsweise das Starttriplet GTG. Dem Starttriplet folgt dann die eigentliche Signalsequenz für das Leaderprotein und anschliessend für das maturierte Subtilisin Carlsberg oder dessen Varianten bzw. Teilstücke. Unter Leadersequenz wird hier eine Prosequenz, Presequenz oder eine Pre/-Prosequenz verstanden, die vorzugsweise für die Ausschleusung des Enzyms aus der Zelle verantwortlich ist. Die Struktursequenz ist schliesslich durch ein Stopcodon begrenzt, vorzugsweise durch ein von Bacillus erkanntes Stoptriplet, wie beispielsweise TAA. Danach kann sich eine Terminatorsequenz anschliessen, wobei Sequenzen bevorzugt sind, die sich in sich selber paaren können und damit zur Schleifenbildung führen (Stem-loop). Derartige Terminatorsequenzen haben die Funktion, die Synthese der messenger-RNA für das betreffende Genprodukt zu begrenzen. An beiden Enden der geschilderten isolierten, doppelsträngigen Desoxyribonukleinsäuren können sich weitere Sequenzen anschliessen, vorzugsweise solche, denen keine spezielle Expressionswirkung zugeschrieben werden kann. Die Sequenz für das maturierte Enzym kann im Rahmen der Erfindung gewissen Variationen unterworfen sein. Nach einer ersten Ausführungsform werden Sequenzen bereitgestellt, die für Subtilisin Carlsberg kodieren. Bevorzugt sind Sequenzen, die nur aus Codons aufgebaut sind, die in Bacillus gebräuchlich sind. Nach einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung werden isolierte Desoxyribonukleinsäuren beansprucht, die die folgende Sequenz für das maturierte Enzym aufweisen: 10 20 30 40 .... GCGCAAA CCGTTCCTTA CGGCATTCCT CTCATTAAAG CGGACAAAGT GCAGGCTCAA GGCTTTAAGG GAGCGAATGT AAAAGTAGCC GTCCTGGATA CAGGAATCCA AGCTTCTCAT CCGGACTTGA ACGTAGTCGG CGGAGCAAGC TTTGTGGCTG GCGAAGCTTA TAACACCGAC GGCAACGGAC ACGGCACACA TGTTGCCGGT ACAGTAGCTG CGCTTGACAA TACAACGGGT GTATTAGGCG TTGCGCCAAG CGTATCCTTG TACGCGGTTA AAGTACTGAA TTCAAGCGGA AGCGGATCAT ACAGCGGCAT TGTAAGCGGA ATCGAGTGGG CGACAACAAA CGGCATGGAT GTTATCAATA TGAGCCTTGG GGGAGCATCA GGCTCGACAG CGATGAAACA GGCAGTCGAC AATGCATATG CAAGAGGGGT TGTCGTTGTA GCTGCAGCAG GGAACAGCGG ATCTTCAGGA AACACGAATA CAATTGGCTA TCCTGCGAAA TACGATTCTG TCATCGCTGT TGGTGCGGTA GACTCTAACA GCAACAGAGC TTCATTTTCC AGCGTCGCAG CAGAGCTTGA AGTCATGGCT CCTGGCGCAG GCGTATACAG CACTTACCCA ACGAACACTT ATGCAACATT GAACGGAACG TCAATGGCTT CTCCTCATGT AGCGGGAGCA GCAGCTTTGA TCTTGTCAAA ACATCCGAAC CTTTCAGCTT CACAAGTCCG CAACCGTCTC TCCAGCACGG CGACTTATTT GGGAAGCTCC TTCTACTATG GGAAAGGTCT Stop GATCAATGTC GAAGCTGCCG CTCAA TAA. ... Diese Sequenz kodiert für ein Subtilisin Carlsberg, das in der Aminosäuresequenz in den Positionen 158 und61 abweicht. Nach einer weiteren Ausführungsform der Erfindung werden isolierte, doppelsträngige Desoxyribonukleinsäuren beansprucht, die für nicht modifiziertes Subtilisin Carisberg kodieren, d.h., die anstelle der Aminosäure Serin die Aminosäure Asparagin in Position 161 aufweisen, bzw. anstelle der Aminosäure Asparagin in Position 158 die Aminosäure Serin aufweisen. Daraus ergibt sich, dass die In Bacillus gebräuchlichen Basentripletts (genetischen Codes) für diese Aminosäuren in den entsprechenden isolierten Desoxyribonukleinsäuren vorhanden sein müssen. Nach einer weiteren bevorzugten Ausführung form der Erfindung erhalten die isolierten, doppelsträngigen Desoxyribonukleinsäuren zwischen dem Starttriplett und der für das maturierte Enzym kodierenden Sequenz eine Sequenz für ein Leaderprotein. Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind Hybridplasmide für Mikroorganismen der Gattung Bacillus, dadurch gekennzeichnet, dass sie in operabler Form zumindest eine doppelsträngige DNS nach Anspruch 1 enthalten. Erfindungsgemäss soll ein derartiges Hybridplasmid den folgenden Aufbau aufweisen. Sie sollen über einen Resistenzmarker verfügen und zumindest eine enzymatische Spaltstelle für spezifische Spaltenzyme aufweisen, wobei pro Spaltenzym möglichst wenig Spaltstellen, d. h. nicht mehr als 4 und vorzugsweise nicht mehr als eine Spaltstelle vorhanden ist. D.h., die Hybridplasmide sollen durch Einsatz spezieller Enzyme linearisiert werden können. Die Funktion des Resistenzmarkers ist darin zu sehen, dass hierdurch transformierte Mikroorganismen, die die Hybridplasmide enthalten, über ihre Resistenz von solchen unterschieden werden können, die diese Hybridplasmide nicht enthalten. Dem auf diesem Gebiet tätigen Fachmann stehen eine Vielzahl von Ausgangsplasmiden zur Verfugung. Diese verfügen über Resistenzmarker gegen beispielsweise Tetracyclin, Kanamycin, Chloramphenicol, oder andere Antibiotika. Unter den denkbaren Ausgangsplasmiden zur Herstellung der Hybridplasmide sollen solche ausgewählt werden, die für Mikroorganismen der Gattung Bacillus geeignet sind. Die erfindungsgemässen Hybridplasmide werden daher zweckmässigerweise aus Ausgangsplasmiden gewonnen, die ihrerseits für Bacillus geeignet sind. In der Fachliteratur ist eine Vielzahl derartiger Ausgangsplasmide beschrieben worden. Eine grosse Zahl geeigneter Plasmide kann bei Hinterlegungsstellen, so beispielsweise bei dem Bacillus Genetic Stock Center angefordert werden. Geeignete Ausgangsplasmide sind beispielsweise die folgenden: pBCE16, pC194, pUB110, pE194, pSA2100, pPL608, pBD64. Hinweise auf diese Plasmide finden sich in der Fachliteratur an den folgenden Stellen: Bernhard K., Schrempf H., Goebel W., 1978, J. Bacteriol. 133: 897 - 903 Gryczan, T.J., Contente, S., and Dubnau, D. 1978, J. Bacteriol. 134: 318 - 329 Williams, D.M., Duvall, E.J. and Lovett, P.S., 1981, J. Bacteriol. 146: 1162 - 1165 Gryczan, T., Shivakumar, A.G., and Dubnau, D., 1980, J. Bacteriol 141: 246 - 253 Ehrlich, S.D., Bursztyn-Pettegrew. H., Stroynowski, J., and Leaderberg. J., 1977 In " "Recombinat Molecules: Irnpact on Science and Society, S. 69 -80, Raven Press, New York Weisblum, B, Graham, M.Y., Gryczan, T., and Dubnau, D. 1979, C. Bacteriol. 137: 635 - 643 Bei der Auswahl geeigneter Ausgangsplasmide ist darauf zu achten, dass sie durch spezifische Spaltenzyme linearisierbar sind, ohne dabei ihre charakteristischen Eigenschaften zu verlieren. Unter charakteristischen Eigenschaften sind hier die Replikationsfähigkeit, die Resistenz und die Möglichkeit zur Expression in Bacillus zu verstehen, Gängige spezifische Spaltenzyme, mit denen geeignete Ausgangsplasmide linearisiert werden können, sind beispielsweise Bam Hl, Eco Rl, Hin dlii und Pst I. Die erfindungsgemässen Hybridplasmide enthalten die doppelsträngigen isolierten Desoxyribonukleinsäuren, eingeschoben in eine oder mehrere derartiger Spaltstellen. So kann beispielsweise das Ausgangsplasmid pBCE16, das im Sinne der Erfindung besonders geeignet ist, mit Hilfe von Bam Hl linearisiert werden und dann nach Einfügung der erfindungsgemässen doppelsträngigen Desoxyribonukleinsäuren wieder zum Ring geschlossen werden. Nach einer weiteren Ausführungsform der Erfindung werden ausser den ringgeschlossenen Hybridplasmiden auch die korrespondierenden ringgeöffneten Formen sowie Addukte aus 2,3 oder mehreren ringgeöffneten Hybridplasmiden beansprucht, Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind Mikroorganismen stamme der Gattung Bacillus, die Hybridplasmide nach den Ansprechen 2 und folgende enthalten. Zur Erzeugung bzw. Umwandlung geeigneter lilikroorganismenstämme wird der Fachmann solche Stämme auswählen, die Hybridplasmide aufnehmen und in denen diese Hybridplasmide hinreichende Stabilität aufweisen. Bevorzugt können Stämme der Art Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis, Bacillus amyloliquefaciens oder auch Bacillus cereus transformiert werden. Dabei - können transformierte Stämme von nichttransformierten durch Detektions der gebildeten Protease z.B. auf dem nachfolgend beschriebenen immunologischen Weg unterschieden werden, Nach einer Ausführungsform der Erfindung werden Bacillus Stämme, beispielsweise Bacillus subtilis Stämme transformiert, die ihrerseits nicht in der Lage sind, Protease zu bilden. Derartige Stämme sind von Hinterlegungsstellen beziehbar. Es gelingt so, Stämme zu erhalten, die nur das gewünschte Subtilisin Carlsberg oder die beschriebene Variante von Subtilisin Carlsberg herstellen können. In ähnlicher Weise können jedoch auch Stämme erzeugt werden, die zusätzlich zu anderen Proteasen oder Amylasen dann Subtilisin Carlsberg ausscheiden. Namentlich ist es möglich, auf diesem Wege durch Selektion Stämme mit besonders hoher Enzymproduktion zu gewinnen. Zur Isolierung der erfindungsgemässen doppeisträngigen Desoxyribonukleinsäuren geht man von proteasebildenden Stämmen der Art Bacillus licheniformis aus. Geeignet sind hier beispielsweise die folgenden Stämme: Bacillus licheniformis: ATCC 10716, DSM 641 sowie die Stämme DSM 3406 und DSM 3407 (Laborbezeichnung "A 441" und "A 453"). Diese werden gezuchtet wie in der deutschen Patentschrift 29 25 427 beschrieben. Danach werden die Zellen geerntet. Die geernteten Zellen werden der Protoplastierung unterworfen, d.h., es wird mit geeigneten Enzymen insbesondere Lysozym, das Murein-Gerüst aufgelöst und sodann mit Detergentien wie beispielsweise Natriumdodecylsulfat, die eigentliche Zellmembran aufgelöst. Die so entstandenen Lysate können zunächst einer Behandlung mit RNA-spaltenden Enzymen tRNase) oder/und Proteinase K unterzogen werden. Danach folgt der Isolierungsschritt der DNA. Zur Isolierung der chromosomalen DNA sind dem Fachmann eine Reihe von Methoden bekannt, die entweder einzeln oder kombiniert durchgeführt werden können. Nach einer wichtigen Methode wird das Lysat zunächst einer fraktionierten Fällung in Ethanol unterzogen, wobei hochmoleklulare DNA-Stücke abgetrennt und somit isoliert werden können. Eine weitere Methode ist die Auftrennung in einem Dichtegradienten. Dazu wird in einer CäsiumchloridlDNA-Lösung ein Dichtegradient erzeugt. Die Gesamtmenge wird in verschiedene Fraktionen unterteilt, so dass sich die DNA in einzelnen dieser Fraktionen ansammelt, die dann abgetrennt und weiter verarbeitet werden können. In vielen Fällen ist es zweckmässig, die Hauptmenge an Proteinen vor oder während der DNA-lsolierung durch Extraktion mit Chloroformi Isoamylalkohol-Gemisch zu beseitigen. Die Abtrennung der Plasmid-DNA kann grundsätzlich in gleicher Weise geschehen, jedoch ist es dabei zweckmässig im C sium- chlorid Dichtegradienten Ethidiumbromid (roter Farbstoff, der zur Intercalation befähigt ist) einzuführen und damit künstlich einen Dichteunterschied zwischen Plasmid und Chromosomal-DNA herbeizuführen. Die gereinigten isolierten Desoxyribonukleinsäuren werden sodann in geeignetem Puffer (bei pH-Werten zwischen 7 und 7,5) mittels Restriktionsenzymen gespalten. Geeignete Restriktionsenzyme sind beispielsweise Bam HI, Sau 3A oder andere Enzyme, die DNA an spezifischen Stellen zu spalten vermögen. Dabei kann die chromosomale DNA mit den gleichen oder auch unterschiedlichen Enzymen wie die Plasmid DNA behandelt werden. In jedem Falle hat der Fachmann darauf zu achten, dass die Spaltung der chromosomalen DNA nur unvollständig durchgeführt wird, um so Spaltstücke ausreichender Länge zu erhalten, die mit hinreichender Wahrscheinlichkeit das Strukturgen in nichtzerstörter Weise enthalten. Die isolierten doppelsträngigen Desoxyribonukleinsäuren werden mit den linearen Plasmiden vermischt. Dabei werden vorzugsweise die chromosomalen Desoxyribonukleinsäuren in einem hohen Gewichtsüberschuss gegenüber den linearisierten Plasmiden eingesetzt. Vorzugsweise wird ein Verhältnis von 1 : 2 bis 1 : 20, insbesondere von 1 : 5 bis 1 : 10 eingesetzt. Die gemischten Desoxyribonukleinsäuren, die dann bei einer Konzentration von etwa 0,2 mg pro ml vorliegen sollen, werden in einem darauffolgenden Schritt mittels DNA-Ligase verknüpft. Mit dem so erhaltenen Ligationsgemisch werden kompetente Zellen von Bacillus-Arten wie Bacillus subtilis oder Bacillus licheniformis transformiert. Will man erfolgreich transformierte Stämme an ihrer Proteasebildung erkennen, so ist es bevorzugt, solche Stämme zu transformieren, die ihrerseits nicht in der Lage sind, Protease zu bilden oder wenigstens nicht in der Lage sind Subtilisin Carlsberg zu bilden. Es können jedoch auch. die Ausgangsstämme transformiert werden. Um kompetente Zellen zu erhalten, wird der zur Transformation vorgesehene Stamm in einem Minimalmedium bis zur stationären Phase angezogen und danach in einem verdünnten zweiten Minimalmedium weitergezogen. Den so vorbehandelten Mikroorganismen wird meist in Pufferlösung dann das Hybridplasmid als solches angeboten. Danach kann sich eine Wachstungsphase in einem Vollmedium anschliessen (Literatur Cahn, F.H. and Fox, M.S. (1968) J. Bacteriol. 95 : 867 - 875). Die so erhaltenen Mikroorganismen werden sodann einem Selektionsverfahren unterworfen. Dabei wird üblicherweise zunächst in einem Medium angezüchtet, das ein Antibiotikum enthält, gegen das das Hybridplasmid Resistenz vermittelt. Auf diese Weise können in einem ersten Selektionsschritt Organismen erhalten werden, die tatsächlich das Hybridplasmid in einer oder mehreren Kopien enthalten. Diese Mikroorganismen werden dann in einem weiteren Selektionsschritt hinsichtlich ihrer Fähigkeit, Subtilisin Carlsberg zu bilden, selektioniert. Für diesen Selektionsschritt kann vorzugsweise eine immunologische Methode eingesetzt werden. Eine bevorzugte Methode basiert auf einem Verfahren von Broome und Gilbert. Hierzu werden zunächst, wie von Buckel beschrieben, Antikörper gegen Subtilisin Carlsberg durch Immunisierung von Kaninchen gewonnen. Ein Teil der Antikörper wird durch Ammoniumsulfatfällung und DEAE-Chromatographie, ein anderer Teil zusätzlich noch durch Affinitatschromatographie mit aktivierter Sepharose 4B angereichert. Der Nachweis von Subtilisin Carlsberg kann wie folgt erbracht werden: Eine PVC-Folie wird mit Antikörpern gegen Subtilisin Carlsberg beschichtet. Die beschichtete Folie wird auf die zu untersuchenden Bakterienkulturen gelegt. Dabei wird vorhandenes Subtilisin Carlsberg von den Antikörpern gebunden. In einem weiteren Schritt werden an den Antikörper-Subtilisin-Carlsberg- Komplex die affinitätschromatographisch gereinigten Subtilisin Carlsberg Antikörper gebunden, an die in einem vorherigen Schritt Peroxydase gekoppelt worden war. (1) Broome, S. s Gilbert, W. (1978) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 75, 2746 - 2749 (2) Buckel, P s Zehelein, E. (1981) Gene 16, 149 - 159 Die Detektion wird mit Tetramethylbenzidin als Peroxydase Substrat durchgefuhrt. Bei Anwesenheit von Subtilisin Carlsberg positiven Klonen entwickelt sich eine blaugrüne Farbe. Die geschilderte immunologische Trennmethode bietet im Zusammenhang mit der Erfindung grosse Vorteile. So wird es dadurch möglich, gezielt solche Stämme zu erkennen, die tatschlich Subtilisin Carlsberg bilden. Dies ist besonders von Bedeutung, wenn mit Stämmen gearbeitet wird, die auch noch andere nicht auf das immunologische Verfahren ansprechende Stoffwechselprodukte aufweisen. Ein weiterer Vorteil des Detektionsverfahrens liegt darin, dass diese Arbeitsweise es ermöglicht, aus einer grossen Vielzahl transformierter und nicht transformierter Stämme die Klone mit Sicherheit auswählen zu können. Aus den so isolierten Klonen, die die erfindungsgemässen Hybridplasmide enthalten, können die Hybridplasmide in der Anfangs beschriebenen Art und Weise durch Zelilyse und anschliessend Abtrennung im Dichtegradienten in Gegenwart von Ethidiumbromid isoliert werden. Auf diese Weise stehen Hybridplasmide in gereinigter Form zur Verfugung. Störendes Ethidlumbromid kann dabei durch Extraktion mit Isopropanol abgetrennt werden. Die gereinigten Hybridplasmide lassen sich in andere Bacillus-Stämme unter den oben beschriebenen Bedingungen einführen. Nach einer weiteren Ausführungsform der Erfindung kann die Transformation anstatt über kompetente Zellen über Protoplasten durchgeführt werden. Dazu werden zunächst Protoplasten hergestellt, Indem man die Mureln-Zellwand von Mikroorganismen der Gattung Bacillus mit geeigneten Enzymen auflöst und danach die Hybridplasmide zusammen mit Polyethylenglykol auf die Protoplasten einwirken lässt. Dazu wird vorzugsweise in Pufferlösungen gearbeitet. Die Protoplasten werden dann auf einen Regenerierungsmedium weiter gezüchtet und die so erhaltenen intakten Mikroorganismen, die das erfindungsgemasse Hybridplasmid enthalten, nach den vorgenannten Selektionsverfahren von anderen Stämmen abgetrennt. Beispie' e Chromosomale DNA aus Bacillus licheniformis DSM 641 oder auch ATCC 10716 wurde nach der Methode von Marmur (1) isoliert, mit den folgenden Abwandlungen: Die Zellen wurden in 1 mg Lysozym pro ml in 10 mM Tris-hydrochlorid pH 7,5 mit 25 % Saccharose 20 Minuten in Eis inkubiert bevor EDTA und Natriumdodecyisulfat zugegeben wurde. Die Extraktion mit Chloroformlsoamylalkohol wurde nur einmal durchgeführt. Die DNA wurde dann 20 Stunden mit 42.000 UpM bei 200C in 3 einem Dichtegradienten (Dichte 1,72 g/cm3) mit Hilfe eines Vertikalrotors zentrifugiert und von anderen Zellbestandteilen abgetrennt und durch Austropfen fraktioniert. Plasmid-DNA aus Bacillus subtilis wurde nach der Methode von Bernhard (1) isoliert, wobei, die Plasmid-DNA nach der Dichtegradientenzentrifugation mittels einer Kanüle abgezogen wurde. Als Vektorplasmid für die Klonierung in Bacillus subtilis BR 151 (3) wurde pBCE 16 (2, 4) verwendet. Um das Gen für Subtilisin Carlsberg intakt zu erhalten, wurde eine partielle Spaltung der chromosomalen DNA von Bacillus licheniformis DSM 641 oder ATCC 10716 mit der Restriktionsendonuclease Sau 3A durchgeführt. Da Sau 3A eine 4er Sequenz erkennt, Bam iil jedoch eine 6er-Sequenz, Sau 3A also öfter schneidet, sind die Spaltstellen für eine unvollständige Sau 3A-Spaltung gleichmässiger verteilt als die für eine Spaltung der chromosomalen DNA mit Bam tell. Die Spaltung wurde wie in allen folgenden Fällen entsprechend den Bedingungen des Handbuchs von Maniatis 15) durchgeführt, jedoch für die unvollständige Spaltung die Inkubationszeit, die sonst bei einer Stunde lag, entsprechend verkürzt, um Spaltprodukte zu erhalten, die schwerpunktmässig in der Grösse des Vektors pBCE 16 (ca. 3 Md) liegen. Pro 1 ug DNA wurde ca. 1 Unit Enzym eingesetzt. Der Vektor pBCE 16 wurde mit der Restriktionsendonuclease Bam Hl linearisiert, das die gleichen über- lappenden Enden wie Sau 3A entstehen lässt. Nach der Inkubation wurde das Enzym zweimal mit dem halben Volumen Phenol extrahiert, dann Bam Hl-gespaltenes pBCE 16 und Sau 3A-gespaltene chromosomale DNA im mengenmässigen Verhältnis 1 : 10 gemischt, das Gemisch 5mal mit gleichem Volumen Ether extrahiert und sodann mit doppeltem Volumen Ethanol 20 Minuten bei -700C inkubiert und die DNA durch Zentrifugation pelletiert. Nach Trocknen wurde die DNA in folgendem Puffer gelöst: 66 mM Tris-(hydroxymethyl)-aminomethan, 5mM Mg12, 0,3 mM Adenosintriphosphat, 1,5 mM Dithiothreit und 0,07 mg/ml Rinderserumalbumin. Die DNA-Konzentration wurde auf 200 uglml eingestellt und T4-DNA-Ligase in einer Konzentration von 1 U pro 1 ug eingesetzter DNA zugegeben. Die Ligasereaktion wurde ca. 18 Stunden bei 160C durchgeführt. Das Ligationsgemisch, d.h. die mittels T4-DNA-Ligase verknüpften DNA-Fragmente wurden dann zur Transformation kompetenter Zellen von Bacillus subtilis BR 151 verwendet. Kompetente Zellen von B. subtilis BR 151 wurden nach der Methode von Laird hergestellt, wie sie von Cahm und Fox (6) beschrieben wurde. Zu 0,82 ml kompetenten Zellen wurden 0,18 ml 0,1 M Mg12, 0,13 ml 0,05 M CaCl2 und 0,13 ml 100 mM EGTA (Ethylenglykol bis-2-aminoethylether-N , N , N' ,N'-tetraacetat) pH 7,3 (in dieser Reihenfolge) zugegeben und jeweils durchmischt, nach 5 Minuten leichtem Schütteln bei 30 C dann 10 ul bzw. 2 ug des Ligationsgemisches. Nach 30 Minuten langsamen Schütteln (60 UpM) bei 300C wurde 1 ml 2fach HGP (10 g Pepton aus Casein, 5 g Hefeextrakt, 5 g NaCI und 5 g Glucose/pro Liter) zugegeben. Nach 90 Minuten Schütteln mit 160 UpM bei 300C wurden die Zellen auf Calcium-Caseinat-Agar (nach Frazier und Rupp modifiziert - Merck) mit zusätzlich 0,5 % Casein und 15 ugim Tetracyclin zur Selektionierung der transformierten Zellen zu 100 ul pro Platte mit einem Glasspatel verteilt. Die Platten wurden 48 Stunden bei 370C bebrütet. Mittels chromatographisch an Diethylaminoethylcellulose (DEAE) gereinigter Subtilisin Carlsberg-spezifischer Antikörper in Kombination mit einer von Boehringer/Mannheim lieferbaren "Test-Combination zum immunologischen Nachweis spezifischer Gen-Expression in Mikroorganismen" konnten 6 proteasepositive Klone unter insgesamt ca. 32.000 Transformanten nachgewiesen werden. Einer dieser Klone erwies sich nach mehrmaligem Überimpfen als ausreichend stabil für weitere Untersuchungen. Der Nachweis von S. Carlsberg wurde wie folgt durchgeführt: PVC-Folien wurden zur Er,tfettung 2 Minuten in Isopropanol gebadet, getrocknet und 15 Folien in 40 ml 0,2 M Natriumcarbonatpuffer pH 9,2 mit 0,6 ml DEAE-gereinigte Subtilisin Carlsberg-spezifische IgG-Fraktion 10 Minuten zur Beschichtung inkubiert. Ohne Trocknung werden die Folien in ein Nachbeschichtungsbad überführt und 10 Minuten darin belassen: 40 ml PBS-Puffer+ + 4,8 mg Rinder-Globulin + 40 mg Rinder-Serumalbumin + ) PBS-Puffer pH 7,5: 0,05 M KH2PO4; 0,1 M NaCl Sodann wurden die Folien zwischen Papierhandtuchern getrocknet. Die lgG beschichteten Folien wurden dann auf die bewachsenen Agarplatten aufgelegt und 2 Stunden bei Raumtemperatur inkubiert. Nach Abnehmen der Folien wurden die anhaftenden Zellen mit kaltem Leitungswasser abgespült und beidseitig mit auf 60C temperiertem PBS-Puffer + 0,1 96 Rinderserumalbumin abgespült. Ohne Trocknung wurden die Folien in 50 ml Konjugatbad (50 ml PBS-Puffer mit 0,1 % Rinderserumalbumin + 1 ul Peroxidase-konjugiertes IgG gegen Subtilisin Carlsberg) überführt und darin 4 Stunden bei Raumtemperatur belassen. Die Folien wurden dann mit kaltem Leitungswasser abgespült und anschliessend beidseitig mit 60C temperiertem PBS-Puffer + 0,05 % Tween 20 + 0,1 % Rinderserumalbumin abgespült. Nach Trocknen zwischen Papierhandtüchern wurden die . Folien auf einem Substrat (Boehringer Gen-Expressionskit R) Boehringer Mannheim Gm 611) für die gekoppelte Peroxidase inkubiert. Es handelt sich dabei um Tetramethylbenzidin, das in einer Gelantinegrundlage gelöst ist. Nach 10 bis 30 Minuten Inkubation bei Raumtemperatur entwickelt sich bei positiven Kolonien, d.h. bei Anwesenheit von Subtilisin Carlsberg, eine blaugrüne Farbe. Die Plasmid-DNA des stabilen S. Carlsberg-positiven Klons (pC 50) wurde wie oben beschrieben isoliert. Zur Charakterisierung der pC 50-DNA mittels verschiedener Restriktionsenzyme wurde einzeln und in Kombination mit Ava 1, Bam Hl, Bal I, Eco Rl, Hpa II, Pst 1 und Sst I gespalten. Die Analyse den in der vertikalen Agarosegelektrophorese (7) aufgetrennten Spaltprodukte ergab folgende Plasmidkarte: Beide das klonierte Fragment betreffenden Eco Rl /Pst l-Frag- mente und das sich links anschliessende Eco Rl-Fragment wurden in die Sequenzierungsvektoren pEMBL 8 bzw. pEMBL 9 (8) in seriert und die Sequenz nach der Kettenabbruch-Didesoxymetho de (9) bestimmt. Literatur: 1. Marmur, J. (1961) J. Mol. Biol. 3: 208-218 2. Bernhard, K., H. Schrempf and W. Goebel (1978) J. Bacteriol. 133: 897-903 3. Bacillus Genetic Stock Center Nr. 1A40 4. Bacillus Genetic Stock Center Nr. 1E9 5. Maniatis, T., E.F. Fritsch, J. Sambrook (1982), Cold Spring Harbor 6. Cahn, F.H. and Fox, M.S. (1968) J. Bacteriol. 95: 867-875 7. Meyers, J., D. Sanchez, L. Elwell and S. Falkow (1975) J.Bacteriol-. 127: 1529-1537 8. Dente, L., G. Casareni and R. Cortese (1983), Nucleic Acids Research 11: 1645-1655 9. F. Sanger, S. Nicklen and A.R. Coulson (1977) Proc. Nat. Acad. Sci. USA 74: 5463-5467

Claims: Isolated, double-stranded deoxyribonucleic acids consisting of a structural gene which only codes for a polypeptide start and stop codons in an operable sequence a ribosome binding site a promoter characterized in that they have the following structure: promoter recognized by the RNA-polymerase of microorganisms of the genus bacillus ribosome binding site, start codon structural gene which codes for subtilisin Carlsberg of the sequence or its proteolytically active sub-units or proteolytically active variants, including their leader sequences, stop codon, DNA-sequences containing up to 400 base pairs without any special expression effect optionally being present at both ends. Hybrid plasmids for microorganisms of the genus bacillus, characterized in that they contain at least one double-stranded DNA according to claim 1 in operable form. Hybrid plasmids as claimed in claim 2, characterized in that they contain a resistance marker and, for the insertion of foreign DNA, at least one enzyme-specific cleavage site, preferably no more than 1 cleavage site being present per restriction enzyme. Hybrid plasmids as claimed in claims 2 and 3, characterized in that they contain a resistance marker and, for the insertion of foreign DNA, cleavage sites for specific DNA-cleaving enzymes, preferably no more than four and more preferably only one cleavage site being present for each restriction enzyme. Hybrid plasmids as claimed in claims 2 to 4, characterized in that they are derived from pBCE16 and the deoxyribonucleic acids according to claim 1 contain BamHI inserted into the cleavage site. Microorganism strains of the genus bacillus containing hybrid plasmids according to claims 1 to 5. Microorganism strains as claimed in claim 6, characterized in that they belong to the species Bacillus subtilis or Bacillus licheniformis. A process for the preparation of subtilisin Carlsberg, characterized in that microorganism strains according to claims 6 and 7 are cultivated. A process as claimed in claim 8, characterized in that microorganism strains according to claims 6 and 7 are cultivated which contain hybrid plasmids coding for a modified subtilisin Carlsberg which contains the amino acid serine instead of the amino acid apsaragine in position 158 and asparagine instead of serine in position 161.

Inventors: BARTNIK, FRIEDHELM, DR., BERGER, HARALD, DR., GOEBEL, WERNER, PROF. DR., KREFT, JUERGEN, DR., Kreft, Jürgen, Dr.
Applicants: HENKEL KOMMANDITGESELLSCHAFT AUF AKTIEN
Application year: 1986
Main classification: C12N15
IPC codes: G01N33, C12Q1, C12N15, C12N9, C12R1, C12N1