Method and reagent for the determination of a luteinizing hormone, as well as the appropriate monoclonal hormone

Abstract: The immunological method for determining luteinising hormone (LH) entails using at least one monoclonal antibody which is directed against LH and cross-reacts only slightly, if at all, with other glycoprotein hormones. Processes for obtaining such antibodies, and hybridoma cell lines which produce such antibodies are described.

Description: Verfahren und Reagenz zur Bestimmung des luteinisierenden Hormons sowie hierzu geeignete monoklonale Antikörper Die Bestimmung des luteinisierenden Hormons (LH) in KörperflüssìgKeiten, beispielsweise Urin, Serum und Plasma wird hauptsächlich angewendet, um den endokrinologischen Status von Hypotnalamus, Hypophyse und Gonaden beurteilen zu können. Diese Untersuchungen dienen vor allem der Differenzialdiagnose von Hypogonadismus, Infertilität usw. Daneben wird die LH-Bestimmung eingesetzt, um den Ovulationszeitpunkt bei der Induktion von Scnwangerscnaften zu ermitteln. In allen diesen Fällen liegen die Serumwerte im physiologischen Bereich. Darüber hinaus wird die Konzentration von LH im Serum auch lediglich zu dem Zweck gemessen, um eine Aussage über die biologische Wirksamkeit dieses Hormons zu erhalten. Von diagnostischer Bedeutung ist daher im wesentlichen die Kenntnis des Serumspiegels des nativen Hormons. Die pnysiologische Konzentration von humanem LH im Serum liegt in den folgenden Bereichen: Männer 4 - 24 mIU/ml Frauen vor Menopause, Zyklus 10 - 20 mIU/ml Frauen Ovulationspeak 80 - 100 mIU/ml Frauen nach Menopause 80 - 150 mIU/ml Für die Bestimmung von LH eignen sich vor allem immunologische Testverfahren, bei denen das Hormon als Antigen mit einem oder mehreren dagegen gerichteten Antikörpern bestimmt wird. Die Antikörpergewinnung mit diesen Polypeptid-Hormonen ist mit Schwierigkeiten verbunden, da alle Polypeptid-Hormone schlecht immunogen sind. Wegen der Homologie zwischen LH und anderen Glykoprotein-Hormonen, wie beispielsweise dem Follikel stimulierenden Hormon (FSH), Thyreotropin stimulierenden Hormon (TSH) und humanen Choriongonadotropin (nCG), ist es sehr schwierig, spezifische Antikörper gegen eines dieser Hormone zu gewinnen. Ein gegen eines dieser Glykoprotein-Hormone gerichteter Antikörper weist üblicherweise mehr oder weniger Kreuzreaktivität mit den übrigen Glykoprotein-Hormonen auf. Im Clinica Cnemica Acta 133 (1983), Seite 263 - 274 werden monoklonale Antikörper gegen LH beschrieben, die mit TSH und hCG zu 10 % und mit FSH zu 3 % kreuzreagieren. Aus GB-A-2 111 201 ist ebenfalls ein monoklonaler Antikörper gegen LH bekannt. Dieser reagiert jedoch ebensogut mit hCG. Ein monoklonaler Antikörper der spezifisch gegen LH gerichtet ist und keine Kreuzreaktivität mit den übrigen Glykoprotein-Hormonen aufweist, ist bisher nicht bekannt. Deshalb ist es derzeit nicht möglich, LH immunologisch zu bestimmen, ohne dass andere Glykoprotein-Hormone mehr oder weniger mit erfasst werden. Aufgabe der Erfindung war es, ein neues immunologisches Verfahren und Reagenz bereit zu stellen, mit dessen Hilfe LH auch in Gegenwart von anderen Glykoprotein-Hormonen spezifisch erfasst werden kann. Gelöst wird diese Aufgabe durch das erfindungsgemässe immunologische Verfahren und Reagenz. Gegenstand der Erfindung ist daher ein immunologisches Verfahren zur Bestimmung des luteinisierenden Hormons, bei dem mindestens ein monoklonaler Antikörper eingesetzt wird, der spezifisch gegen LH gerichtet ist und mit anderen Glykoprotein-Hormonen weniger als 3 % kreuzreagiert, sowie ein hierfür geeignetes Reagenz. Als immunologische Bestimmungmethode eignen sich im Prinzip alle gängigen Immuno-Assays, wie Radio-Immuno-Assay, Enzym-Immuno-Assay, Fluoreszenz-Immuno-Assay usw. Ferner sind sämtliche Verfahrensvarianten, wie kompetitiver Immuno-Assay, Sandwich-Verfahren usw., anwendbar. Zur Markierung eignen sich die für die jeweilige Bestimmungsmethode üblichen Mittel. So werden bei einem Radio Immuno-Assay Radioisotope, beispielsweise 125J, zur Markierung verwendet. Für einen Enzym-Immuno-Assay sind sämtliche, hierfür üblicherweise eingesetzten Enzyme, beispielsweise Peroxidase oder l5-Galaktosidase, geeignet. Für einen Fluoreszenz-Immuno-Assay sind die üblicnen fluoreszierenden Gruppen als Marker brauchbar. Einzelheiten dieser verschiedenen Testmethoden und Verfahrensvarianten sind dem Fachmann bekannt. Vorteilhaft sind Testvarianten, bei denen mindestens zwei monoklonale Antikörper eingesetzt werden, die gegen verschiedene antigene Determinanten des LH gerichtet sind und von denen mindestens einer mit anderen Glykoprotein-Hormonen weniger als 3 % kreuzreagiert. Zur Bestimmung von LH hat sich als besonders zweckmässig das Sanawicn-Verfahren erwiesen, bei dem das zu bestimmende Antigen mit einem trägergebundenen und einem markierten Antikörper in Kontakt gebracht wird. Für ein solches Bestimmungsverfahren kann beispielsweise ein erfindungsgemässer, spezifischer monoklonaler Antikörper an die Festphase gebunden werden. Dieser wird in dem ersten Inkubationsschritt mit der Probe, die zu bestimmendes LH sowie im allgemeinen andere Glykoprotein-Hormone enthält, inkubiert. Hierbei wird von dem spezifischen Antikörper selektiv LH gebunden. Nach dem üblichen Waschschritt wird mit dem markierten Antikörper inkubiert. Dieser muss nicht notwendigerweise spezifisch gegen LH gerichtet sein, sondern kann auch mit anderen Glykoprotein-Hormonen kreuzreagieren. Das Verfahren kann auch mit einem unspezifischen trägergebundenen Antikörper durchgeführt werden. Es ist dann jedoch erforderlich, dass als marKierter Antikörper ein erfindungsgemässer, spezifisch gegen LH gerichteter Antikörper eingesetzt wird. Varianten des Sandwich-Verfahrens sind ebenfalls zur Bestimmung von LH geeignet. So kann beispielsweise zunächst mit einem nicht markierten, löslichen Antikörper und dem markierten Antikörper ein löslicher Sandwicn-Komplex gebildet werden. Dieser wird anschliessend mit Hilfe eines trägergebundenen Antikörpers, der gegen den Fc-Teil des nicht markierten löslichen Antikörpers gerichtet ist, unlöslich gemacht. Bei dieser Verfahrensvariante muss mindestens der nicht markierte, lösliche Antikörper ein erfindungsgemässer Antikörper sein. Der marKierte Antikörper wird dabei vorzugsweise im Überschuss eingesetzt. Das Wesentliche der vorliegenden Erfindung ist darin zu sehen, dass es überraschenderweise gelang, für diese immunologischen Verfahren monoklonale Antikörper bereit zu stellen, die spezifisch gegen LH gerichtet sind, und die daher eine spezifische Bestimmung von LH ermöglichen. Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind daher monoklonale Antikörper gegen LH, deren Kreuzreaktivität mit anderen Glykoprotein-Hormonen weniger als 3 % beträgt. Zur Gewinnung der erfindungsgemässen monoklonalen Antikörper werden Versuchstiere, beispielsweise Mäuse, mit LH immunisiert. Zur Immunisierung wird das Immunogen beispielsweise in Kombination mit einem Adjuvans in üblicher Weise verabreicht. Bevorzugt wird als Aduvans Aluminiumhydroxid zusammen mit Bordetella pertussis oder Freundschem Adjuvans eingesetzt. Die Immunisierung erfolgt vorzugsweise über mehrere Monate mit mindestens vier Immunisierungen in 4 - 6wöchigem Abstand (Injektion intraperitoneal). Aus so immunisierten Tieren werden B-Lymphozyten gewonnen, die mit einer permanenten Myelomzellinie fusioniert werden. Die Fusionierung erfolgt nach dem bekannten Verfahren von Köhler und Milstein (Nature 256, 1975, S. 495 - 497). Die hierbei gebildeten Primärkulturen von Hybridzellen werden in üblicher Weise, z. B. unter Verwendung eines handelsüblichen Zellsorters oder durch "limiting dilution" kloniert. Es werden Jeweils die Kulturen weiterverarbeitet, die in einem geeigneten Testverfahren, beispielsweise einem Enzym-Immuno-Assay (ELISA-Verfahren), positiv gegen LH und negativ bzw. nur wenig mit den anderen Glykoprotein-Hormonen reagieren. Man erhält so mehrere Hybridoma-Zellinien, die die erfindungsgemässen monoklonalen Antikörper produzieren. Nach bekannten Methoden können diese Zellinien kultiviert und die von ihnen produzierten monoklonalen Antikörper isoliert werden. Beispielhaft für auf diese Weise gewonnen Zellinien seien angeführt: Klon 369 (NCACC 84122001) und Klon 799 (NCACC 84122005). Die Zellinien sind unter der Jeweils angegebenen Nummer bei der Hinterlegungsstelle NCACC (National Collection of Animal Cell Cultures) hinterlegt. Die so gewonnenen monoklonalen Antikörper zeichnen sich dadurch aus, dal3 sie eine sehr hohe Affinität (Affinitatskonstante in der 9 11 Grössenordnung von 10 bis 10 1/mol) gegen LH besitzen und mit anderen Glykoprotein-Hormonen weniger als 3 % kreuzreagieren. Besonders bevorzugte monoklonale Antikörper weisen eine Kreuzreaktivität gegenüber anderen Glykoprotein-Hormonen, wie hCG, FSH und TSH, von weniger als 1 %, ganz besonders bevorzugt von weniger als 0,1 % auf. Zur Bestimmung der Affinität und der Kreuzreaktivität mit anderen Hormonen stehen die üblichen, dem Fachmann bekannten Verfahren zur Verfügung. Die erfindungsgemässen monoklonalen Antikörper eignen sich hervorragend dazu, in einer Probe, beispielsweise Serum oder Plasma, das Hormon LH in Gegenwart anderer Glykoprotein-Hormone spezifisch zu bestimmen. Für diese Bestimmungsverfahren können die monoklonalen Antikörper als solche oder Fragmente hiervon, welche die entsprechenden immunologischen Eigenschaften aufweist, beispielsweise Fab-Fragmente, verwendet werden. Unter dem Begriff monoklonale Antikörper" werden daher sowohl die vollständigen Antikörper als auch die Fragmente verstanden. Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele näher erläutert: Beispiel 1 Gewinnung von monoklonalen Antikörpern gegen LH Balb/c-Mäuse, 8-12 Wochen alt, werden mit 100 /ug hLH (Firma Immunex), an Aluminiumhydroxid und Bordetella pertussis adsorbiert, intraperitoneal immunisiert. Nach 6 Wochen werden drei weitere Immunisierungen in 4wöchigem Abstand durchgeführt. Dabei werden jeweils 50 /ug LH, an Aluminiumhydroxid und Bordetella pertussis adsorbiert, intraperitoneal verabreicht. Ungefähr vier Monate nach der letzten Immunisierung wird fusioniert. Vier Tage und drei Tage vor der Fusionierung wird jeweils noch einmal mit 100 /ug LH/PBS (= phosphate buffered saline), intraperitoneal bzw. intravenös immunisiert. Zur Fusion werden in Anlehnung an Galfré, Methods in Enzymology, 73 8 (1981), Seite 3, einmal 10 Milzzellen einer immunisierten Maus mit 2 x 10 Myelomzellen (P3x63Ag8-653, ATCC-CRL 8375) gemischt und anschlieend 10 Minuten zentrifugiert (300 g, 40 C). Die Zellen werden noch einmal mit BSS (= balanced salt solution) gewaschen und bei 400 g zentrifugiert. Der Überstand wird entfernt. Das Zellsediment wird mit 1 ml 50 %iger PEG-Lösung (MG 4000, Merck) versetzt. Danach wird bei Raumtemperatur 5 ml RPMI 1640-Medium (RPMI = Rosewell Parker Memory Institut) ohne fötalem Kälberserum (FKS), anschliessend noch einmal 5 ml RPMI 1640-Medium, mit 10 % FKS langsam zugetropft, mit Medium auf 50 ml aufgefüllt und 10 Minuten bei 400 g zentrifugiert. Die sedimentierten Zellen werden in RPMI 1640-Medium mit 10 % FKS aufgenommen. Je 2 x 105 Milzzellen werden auf 24-well-Zellxulturplatten (Firma Nunc) eingesät. Zu jeder Kultur werden 1 x 105 Milzzellen oder 5 x 104 Peritoneal-Exudat Zellen als Futterzellen zugefügt. Am folgenden Tag wird Hypoxanthin Azaserln-Selektionsmedium (100 mM Hypoxanthin, 1 ,ug/ml Azaserin) zugegeben. Nach ca. 7 - 10 Tagen werden bereits viele Klone sichtbar. Der Überstand der Primärkulturen wird nach einem in Beispiel 2 beschriebenen ELISA-Verfahren getestet. Primärkulturen, die Antigen-spezifische Antikörper enthalten, werden mit Hilfe eines fluoreszenzaktivierenden Zellsorters auf 96-well-Zellkulturplatten (Firma Nunc) weiter kioniert. Als Futterzellen dienen 1 x 104 Peritoneal-Exudat-Zellen oder 2 x 10 Milzzellen pro 96er-well der Kultur. Auf diese Weise konnten die beiden Hybridoma-Zellinien Klon 369 und Klon 799 isoliert werden, die bei der Hinterlegungsstelle NCACC (= National Collection of Animal Cell Cultures) unter den Hinterlegungsnummern NCACC 84122001 (= Klon 369) und NCACC 84122005 (= Klon 799) hinterlegt worden sind. Zur Erzeugung von Ascites werden 5 x 106 Hybrid-Zellen intraperitoneal Mäusen gespritzt, die zuvor 1 - 2mal mit 0,5 ml Pristan vorbehandelt worden sind. Eine bis drei Wochen danach kann aus den Mäusen Ascites-Flüssigkeit gewonnen werden. Hieraus können in üblicher Weise die Antikörper isoliert werden. Diese monoklonalen Antikörper sind spezifisch gegen LH gerichtet und zeigen keine bzw. nur eine geringe Kreuzreaktivität mit anderen Glykoprotein-Hormonen. Sie werden im folgenden mit MAK 369 (von Klon 369) bzw. MAK 799 (von Klon 799) bezeichnet. Die beiden monoklonalen Antikörper gehören der Subklasse IgGl/K an. Sie besitzen die folgenden Affinitäten: MAK 369 = 7.9 x 1010 1/mol 1011 MAK 799 = 9.5 x 10 1 1/mol. Zur Ermittlung der Affinitäten werden Kompetitionskurven mit dem homologen Antigen nach Scatchard (Ann. N. Y. Acad. Sci. 51 (1949) Seite 660) ermittelt und ausgewertet. Die hierfür erforderlichen Messungen werden analog Beispiel 2 durchgeführt. Beispiel 2 Screening-Test auf Antikörper gegen LH Um die Anwesenheit und Spezifität von Antikörpern gegen LH im Serum lmmunlsierter Mäuse oder in dem Kulturüberstand der Hybridzellen oder in Ascites zu erkennen, wird ein ELISA-Verfahren als Testprinzip verwendet: Mikrotiterplatten werden mit 1 /ug LH/ml Beschlcntungspuffer (0,2 M Natrlumcarbonat/-Bicarbonat, pH 9,3-9,5) bei 37 OC über Nacht beschichtet. Es wird 10 Minuten mit 0,9 % Natriumchloridlösung und 1 % Albuminlösung nachbehandelt. AnsctlieXend wird mit 0,9 % Natriumchloridlösung gewaschen. Anschliessend wird bei 37 OC eine Stunde mit 100 ul Probe inkubiert und erneut mit 0,9 % Natriumchloridlösung gewaschen. Es folgt eine weitere Inkubation (eine Stunde 37 OC) mit 100 - 150 mU/ml eines Schaf-anti-Maus-IgG-Peroxidase-Konjugats. Nach einem erneuten Waschschritt mit 0,9 % Natriumchlorid wird die Peroxidaseaktivität in üblicher Weise bestimmt (beispielsweise mit ABTS, 30 Minuten bei Raumtemperatur, abgelesen wird die Extinktionsdifferenz, mE, bei 405 nm). Der ELISA-Test kann auch wie folgt durchgeführt werden: Die Mikrotiterplatten werden zunächst mit einem Schaf-anti-Maus-IgG beschichtet (20 - 30 /ug/ml Beschichtungspuffer, eine Stunde bis über Nacht, 370 C). Danach wird wie oben beschrieben, weiter behandelt, die Probelösung zugesetzt und erneut gewaschen. Schliesslich wird mit 250 mU/ml eines LH-Peroxidase-Konjugats inkubiert (1 Stunde, 37 OC). Es wird erneut gewaschen und die Peroxldase-Aktivität, beispielsweise mit ABTS bestimmt. Beispiel 3 Bestimmung der Kreuzreaktivität mit anderen Glykoprotein-Hormonen Es wird, wie in Beispiel 2 beschrieben, vorgegangen. Zunächst wird die Reaktivität von LH bestimmt. Dann wird zu dem jeweiligen monoklonalen Antikörper jeweils das auf Kreuzreaktion zu prüfende Antigen (hCG, TSH, FSH) in steigender Konzentration zugegebenen. Die Kreuzeaktionen werden anschliessend nach folgender Formel berechnet: C(LH) x 100 = % Kreuzreaktion C (kreuzreagierendes Antigen) C = Konzentration des Antigens, die zur Erreichung von 50 % des maximalen Signals erforderlich ist. In der folgenden Tabelle 1 sind die gemessenen Werte für MAK 369 und MAK 799 zusammengestellt. Tabelle 1: Kreuzreaktion der monoklonalen Antikörper MAK 369 und MAK 799 gegen LH mit hCG, FSH und TSH EMI9.1 <tb> Glyko- <SEP> Herkunft <SEP> max. <SEP> Konz. <SEP> Konzbereich. <SEP> MAK <SEP> 369 <SEP> MAK <SEP> 799 <tb> normon <SEP> (Firma) <SEP> im <SEP> Serum <SEP> im <SEP> Test <SEP> auf <SEP> % <SEP> Kreuz- <SEP> % <SEP> Kreuz <tb> <SEP> Kreuzreakt. <SEP> reakt. <SEP> reakt. <tb> hCG <SEP> UCB, <SEP> 200 <SEP> IU/ml <SEP> 0 <SEP> - <SEP> 250 <SEP> IU/ml <SEP> < 0.1 <SEP> < 0.1 <tb> <SEP> Belgien <tb> FSH <SEP> UCB, <SEP> 400 <SEP> mIU/ml <SEP> 0 <SEP> - <SEP> 9 <SEP> IU/ml <SEP> < 0.1 <SEP> < 0.1 <tb> <SEP> Belgien <tb> > -TSH <SEP> Boehringer <SEP> 1000 <SEP> IU/ml <SEP> O <SEP> - <SEP> 9000 <SEP> IU/ml <SEP> < 0.1 <SEP> < 0.1 <SEP> <tb> <SEP> Mannheim <tb> ss-TSH <SEP> Boehringer <SEP> 1000 <SEP> IU/ml <SEP> 0 <SEP> - <SEP> 9000 <SEP> IU/ml <SEP> <SEP> < 0.1 <SEP> < 0.1 <SEP> <tb> <SEP> Mannheim <tb> Beispiel 4 Bestimmung der Epitopspezifität Eine Mikrotiterplatte wird mit 10 /ug/ml Schaf-Antikörper gegen die <RTI ID=10.1> Fc-Region eines Maus-Antikörpers in 0.2 M Carbonatpuffer, pH 9.6, 2 Stunden bei 370 C oder über Nacht bei 4 C beschichtet. Danach wird mit PBS/Tween 20 (0,1 %), pH 7.35 gewaschen. Anscnliessend werden 100 ,ul eines monoklonalen Antikörpers (MAK 1, Konzentration 10 /ug/ml) in Inkubationspuffer (PBS, 0.1 % Rinderserumalbumin (RSA), 0,1 % Tween 20) zugegeben und 2 Stunden bei 370 C inkubiert. Ein LH-Peroxidase-Konjugat (100 mU/ml) wird mit 10 ,ug/ml eines zweiten monoklonalen Antikörpers (MAK 2) in Lösung bei 4 C über Nacht vorinkubiert. Nach der Inkubation der Platte mit MAK 1 wird überschüssiger MAR 1 durch Waschen mit PBS-Tween 20 entfernt. Die Platte wird darauf mit 1 % Maus-Normalserum in PBS-RSA 30 Minuten bei Raumtemperatur nachbeschichtet. 100 ul des vorinkubierten MAK 2/LH-Peroxidase Komplexes wird auf die Platte gegeben und 2 Stunden bei 370 C inkubiert. Die gebundene Peroxidase-Aktivität wird mit ABTS als Substrat sichtbar gemacht. Die gemessene Farbintensität ist direkt proportional dem an MAK 1 gebundenen MAK 2/LH-Peroxidase-Konjugats. Für MAK 799 als MAK 1 und MAK 369 als MAK 2 beträgt die gebundene Aktivität 34 % der nicht kompetitierten LH-POD-Aktivität.. Die gefundenen Ergebnisse zeigen, dass die beiden monoklonalen Antikörper gegen verschiedene Epitope des Antigens LH gerichtet sind Beispiel 5 Bestimmung von LH A) Herstellung der Reagenzlösungen 1) Substratpuffer: 15 mM Natrium-Pnosphat-Puffer, pH 7,4 15 mM Natriumchlorid 5 mM EDTA 0,2 % Rinderserumalbumin, pH 7,4 5 mM o-Nltropnenylgalactosid 2) Rezeptor-l-Lösung: Als Rezeptor 1 wird ein erfindungsgemässer monoklonaler Maus-anti-hLH-Antikörper eingesetzt. Die diesen Antikörper enthaltende Ascitesflüssigkeit wird ad 1.8 M mit Ammonium sulfat versetzt. Das Präzipitat wird in einem Puffer am 15 mM Natriumphosphat, pH 7,0 und 50 mM Natriumchlorid auf genommen. Die so erhaltene Lösung wird einer Passage über DEAE-Cellulose unterworfen. 3) Rezeptor-3-Lösung: Als Rezeptor 3 wird ebenfalls ein erfindungsgemässer mono Klonaler Maus-Anti-hLH-Antikörper eingesetzt, der jedoch eine andere antigene Determinante als Rezeptor 1 erkennt. Die diesen Antikörper enthaltende Ascitesflüssigkeit wird, wie unter 2) angegeben, aufgereinigt. Der vollständige Anti körper wird in bekannter Weise zum Fab-Fragment gespalten. Die erhaltenen Fab-Fragmente werden mit ss-Galactosidase ge koppelt nach der Methode von R. R. Porter, Biochem. J. 73, (1959) S. 119. 4) aktivierter Rezeptor-2-Lösung: Schaf-anti-Maus-Fcr Antiserum wird ad 1,8 M mit Ammonium sulfat versetzt. Das Präzipitat wird in einem Puffer aus 15 mM Natriumphosphat, pH 7,0 und 50 mM Natriumchlorid auf genommen. Die so erhaltene Lösung wird einer Passage über DEAE-Zellulose unterworfen. B) Herstellung von Reagenzträgern 1) Reagenzträger 1: 40 /ul einer Lösung, die pro ml 100 umol Natriumphosphat pH 7,3 (37 C), 2 umol Magnesiumchlorid, 0,9 % Natriumchlorid, 0,5 % Rinderserumalbumin, 5 ug/ml Anti-hLH-monoklonale Antikörper aus Maus (Rezeptor-l-Lösung), 100 mU Anti-nLH-Antikörper-(Maus)-Fab-Fragment ss-Galactosidase-Konjugat (Rezeptor-3-Lösung) enthält. Wird auf ein Vlies aufgetropft, das aus kommer ziellem Polyesterpapier besteht. Anschliessend wird bei Raumtemperatur getrocknet. Diese Vliese werden bis zu ihrer Verwendung bei 40 C und einer relativen Luft feuchtigkeit von 20 % aufbewahrt. 2) Reagenzträger 2: Auf ein Zellulose-Vlies werden nach dem bekannten Bromcyan-Aktivierungsverfahren (DE-OS 1768512) Schaf Antikörper gegen den Fcr-Teil von Maus-Antikörpern (aktivierter Rezeptor-2-Lösung) fixiert, wobei pro g Fasermaterial 10 ug Antikörper zur Fixierung angeboten werden. Durch Waschen wird ungekoppelter Antikörper entfernt und das Vlies schonend bei Raumtemperatur getrocknet. Die Lagerung der so erhaltenen Vliese folgt analog Reagenzträger 1. Die Bestimmung mit Hilfe dieser beiden Reagenzträger 1 und 2 erfolgt unter Zuhilfenahme der in der Deutschen Patentanmeldung 3425008.5 beschriebenen Vorrichtung zur Durcnführung analytischer Bestimmungen. Diese offenbart ein Rotoreinsatzelement für Zentrifugalanalysenautomaten, bestehend aus einem Formkörper, der eine Probenauftragskammer, die mit einer Mehrzahl von Reagenzfeldern in Verbindung steht, die jeweils ein mit einem bestimmten Reagenz imprägniertes saugfähiges Trägermaterial enthalten, wenigstens eine Mischventilkammer und eine Messkammer aufweist, die zusammen einen Probenflüssigkeitstransportweg bilden, der von radial innen nach radial weiter aussen führt, wenn das Einsatzelement auf dem Rotor befestigt ist und weiter wenigstens eine weitere Kammer für die Aufnahme einer Flüssigkeit und einen Transportweg, der von dieser Kammer zur Messkammer führt und mit dem Probenflüssigkeitstransportweg mindestens teilweise identisch ist, aufweist. Dabei führt der Probenflüssigkeitstransportweg von einer Probenauftragskammer (P) über eine mit saugfähigem Material yefüllte, Puffer enthaltende Kammer (a) eine Kammer (c) und eine zwischen den Kammern (a) und (c) angeordnete erste Ventilkammer (VK1) zu einer zweiten Ventilkammer (VK2) und von dieser über die Kammer (d) und über eine Auffangkammer (AK) zur Messkammer (K). Zur Aufnahme einer weiteren Flüssigkeit ist eine als Pumpenkammer ausgebildete Substratkammer (PK) vorgesehen, welche über eine aus Dosierkammer (DK) und Kapillare (Kap) bestehende Dosiereinrichtung und eine Überlaufkammer (ÜK) mit der zweiten Ventilkammer (VK2) verbunden ist. Abb. 1 zeigt schematisch das verwendete Rotoreinsatzelement. Hierbei wird Reagenzträger 1 auf Feld c des Disposables plaziert und Reagenzträger 2 auf Feld d. Dabei werden 40 ul Probe durch eine Öffnung am oberen Rand direkt auf das Feld a pipettiert. Die Probe ist unverdünnt. 270 ul Substratlösung werden in Kammer PK pipettiert. Durch ein geeignetes Programm, wo hohe Drehzahlen mit Stillstand abwechseln, werden dann Probe und Substratlösung in Richtung Trennmatrix und Küvette gefördert. Dabei werden im Verlauf des Programms die Rezeptoren 1 und 3 durch die Probenflüssigkeit vom Feld c eluiert und die homogene Mischung anschliessend zur Reaktion gebracht. Auf Feld d werden die gebildeten Komplexe an den Rezeptor 2 gebunden. Der Transfer der Probe von Feld c nach d erfolgt innerhalb sehr kurzer Zeit. Die Substratlösung wird durch die Dosierkammer DK in Portionen geteilt, von denen die ersten zum Auswaschen von überschüssigem, nicht komplexiertem Konjugat dienen. Die über Komplexbildung auf d gebundene ss-Galactosidase- AKtivität ist proportional zur in der Probe enthaltenen hLH-Menge. Diese Aktivität wird mit einem weiteren Substratschluck bestimmt, wobei das Substrat in einer Sminütigen Reaktion zu farbigen Produkten umgesetzt wird. Die gebildete Farbe wird in der Küvette bei 410 nm gemessen. Von Eichseren mit bekanntem LH-Gehalt wird die Eichkurve gemäss Abbildung 2 erhalten, die den Bereich von 0 bis 25 mU hLH/ml (standardisiert nach dem ersten IRP-Standard für hLH 68/40) erfasst und eine ausreichend empfindliche Messung hLH in Serum oder Plasma ermöglicht. Anhand dieser Eichkurve kann der un bekannte Gehalt hLH in Körperflüssigkeiten, beispielsweise Serum oder Probe ermittelt werden. Die Wiederfindung von mit 100 IU/ml hCG (1. IRP = 1. internationale Referenzpräpation der WHO) aufgestockten Standards beträgt 96 - 104 %. Beispiel 6 Bestimmung von LH nach dem Sandwich-Prinzip 100 ul einer Lösung, die einen erfindungsgemässen monoklonalen Antikörper gegen LH im Beschichtungspuffer (0,2 M Natriumcarbonat/-Bicarbonat, pH 9,4) in einer Konzentration von 50 ,ug/ml enthält, werden in jede Vertiefung einer Mikrotiterplatte gegeben und für eine Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Anschlieend wird mit Inkubationspuffer (1 % Rinderserumalbumin, 0,9 % NaCl) nachbeschichtet und 30 Minuten bei Raumtemperatur inkubiert. Nach Waschen mit Waschpuffer (0,9 % NaCl, 0,1 % Tween 20) werden in jede Vertiefung 100 /ul Probe, die das zu bestimmende LH enthält, gegeben und 30 Minuten bei Raumtemperatur inkubiert. Nach nochmaligem Waschen mit Waschpuffer wird mit 100 /ul eines Konjugates aus Peroxidase (Aktivität 100 mU/ml) und einem weiteren erfindungsgemässen monoklonalen Antikörper, der jedoch gegen ein anderes Epitop von LH gerichtet ist , beladen und 1 Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Zur Herstellung des Konjugats wird Meerrettich-Peroxidase EC 1.11.1.7. verwendet. Das Konjugat wird hergestellt durch Oxidation mit PerJodat und anscnliessender Reduktion mit Borhydrid, entsprechend der Vorschrift von P. K. Nakane (M. B. Wilson und P. K. Nakane, in W. Knapp ed. "Immunofluorescense and Related Staining Techniques", 1978, Elsevier/North Holland, Biomedical Press, Seiten 215 - 224). Nach Waschen mit Waschpuffer wird mit 100 /ul ABTS-Substratlösung beladen und nach einer Stunde Farbreaktion die Extinktion bei 405 nm in einem ELISA-Reader (Dynatec) gemessen. Zur Herstellung einer Eichkurve werden bei den vorstehend bescnriebenen Verfahren anstelle der Probe Lösungen eingesetzt, die LH in verschiedenen, definierten Konzentrationen enthalten.

Claims: Monoclonal antibody against the luteinizing hormone (LH) which has a cross-reactivity with FSH, TSH and hCG of less than 3 %. Monoclonal antibody as claimed in claim 1, wherein it has a cross-reactivity with FSH, TSH and hCG of less than 1 %. Immunological method for the determination of the luteinizing hormone, wherein at least one monoclonal antibody as claimed in claim 1 is used. Method as claimed in claim 3, wherein at least one monoclonal antibody as claimed in claim 1 is used which is directed against LH and cross-reacts with FSH, TSH and hCG by less than 1 %. Method as claimed in one of the claims 3 or 4, wherein at least two monoclonal antibodies directed against LH are used of which at least one is a monoclonal antibody as claimed in claim 1. Reagent for the determination of luteinizing hormone, wherein it contains at least one monoclonal antibody as claimed in claim 1. Reagent as claimed in claim 6, wherein it contains at least one monoclonal antibody which is directed against LH and cross-reacts with FSH, TSH and hCG by less than 1 %. Reagent as claimed in one of the claims 6 or 7, wherein it contains at least two monoclonal antibodies directed against LH of which at least one is a monoclonal antibody as claimed in claim 1. Process for the isolation of a monoclonal antibody as claimed in one of the claims 1 or 2, wherein suitable animals are immunized with LH, B-lymphocytes are isolated from the spleen of the immunized animals, these are fused with myeloma cells, the hybridoma cells which form are cloned, clones that produce specific antibodies directed against LH are selected and the antibodies produced by them are isolated. Hybridoma cell line which produces monoclonal antibodies as claimed in claim 1. Hybridoma cell lines with the deposit numbers NCACC 84122001 and NCACC 84122005.

Inventors: ERLER KLAUS DR, HUEBNER-PARAJSZ CHRISTA DR, LENZ HELMUT DR, SCHETTERS HARTMUT DR, ERLER, KLAUS, DR., HUEBNER-PARAJSZ, CHRISTA, DR., LENZ, HELMUT, DR., SCHETTERS, HARTMUT, DR., Hübner-Parajsz, Christa, Dr.
Applicants: BOEHRINGER MANNHEIM GMBH, ROCHE DIAGNOSTICS GMBH
Application year: 1986
Main classification: G01N33
IPC codes: G01N33, C12N15, C07K14, C07K16, C12R1, C12N5, C12P21