METHOD FOR THE DETERMINATION OF A PARTNER OF AN IMMUNO-REACTION

Abstract: A method and a reagent for the determination of a partner in an immunological reaction by the immunoassay principle at a temperature between 15 and 40 DEG C is described, where one of the reactants is present in solid phase, and a surface-active agent with an HLB above 20 is added. <IMAGE>

Description: Beschreibung Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Bestimmung eines Partners einer Immunreaktion nach dem Immunoassay-Prinzip bei einer Temperatur zwischen 15 und 4O0C, wobei einer der Reaktionspartner in fester Phase vorliegt. Verfahren zur Immunbestimmung sind weit verbreitet. Dabei gibt es sowohl Verfahren in homogener als auch in heterogener Phase. Bei der Ausführungsform mit der heterogenen Phase wird einer der Reaktionspartner an einen Träger gebunden. Zur Durchführung der Immunbestimmung in heterogener Phase sind nun verschiedene Verfahrensvarianten bekannt, z. B. das Sandwich-Verfahren, das indirekte Verfahren und das Kompetitionsverfahren. Beim Sandwich-Verfahren wird ein Antikörper an den Trager gebunden, die Testlösung wird zugegeben, wobei das in der Testlösung enthaltene spezifische Antigen an den Antikörper gebunden wird. Dann wird ein markierter spezifischer Antikörper für den Antigen-Antikörper-Komplex, oder für Teile des Komplexes, zugegeben, der dann an den Komplex bindet. Uber den markierten Antikörper kann man dann die Menge an Antigen berechnen. Beim indirekten Verfahren wird ein Antigen an dem Trägermaterial gebunden. Man gibt Testlösung dazu, wobei der in der Testlösung enthaltene, für das adsorbierte Antigen spezifische Antikörper mit dem Antigen reagiert. Bei Zugabe eines markierten Antiglobulins bindet das Antiglobulin an den Antigen-Antikörper-Komplex und die Menge des unbekannten Antikörpers im Testserum kann wiederum über das markierte Antiglobulin bestimmt werden. Bei dem Kompetitionsverfahren wird einer der gebundenen Partner der Immunreaktion an das TrZgermate- rial gebunden. Man gibt dann eine Lösung dazu, die sowohl den in unbekannter Menge vorliegenden anderen Partner der Immunreaktion enthält, als auch eine bekannte Menge an markiertem anderem Partner der Immunreaktion. Beide Partner, der markierte und der unmarkierte, konkurrieren um die Bindungsstellen des am Träger gebundenen Partners der Immunreaktion. Zu einer zweiten Probe gibt man eine Standardlösung dazu, die nur markierten Partner enthält. Man kann nun durch Bestimmung der markierten Partner in Standard und Probe aus der Differenz die Menge an unbekanntem Reaktionspartner berechnen. Weitere Möglichkeiten zur Bestimmung ergeben sich bei einem mindestens bivalenten Antigen mit hilfe von drei Rezeptoren, die Antikörper oder Antikörperfragmente sein können. Bei der Durchführung eines Immunoassays mit drei Rezeptoren in heterogener Phase ist einer der drei Rezeptoren immer unlöslich, während die anderen zwei löslich sind, wobei einer der beiden löslichen Rezeptoren markiert ist, während der andere nicht markiert ist. Der unlösliche Rezeptor ist dann gegen den nicht markierten löslichen Rezeptor gerichtet. Zur Durchführung der Bestimmung sind verschiedene Verfahrensvarianten möglich, sowohl einstufige, als auch mehrstufige, in denen die Zugabe der einzelnen Rezeptoren variiert werden kann. Eine weitere Verfahrensvariante besteht darin, das zu bestimmende Antigen in der Probe im ersten Schritt gleichzeitig mit einem löslichen, nicht markierten Rezeptor und einem löslichen markierten Rezeptor in Lösung zusetzen und dann den entstehenden löslichen Sandwich-Komplex in einem zweiten Schritt durch Binden an einen unlöslichen Rezeptor unlöslich zu machen. Zur Markierung der Reaktionspartner sind verschiedene Slöglichkeiten bekannt. So kann einer der Reaktionspartner radioaktiv markiert werden, wobei dann die gemessene Radioaktivität eine Berechnung des zu bestimmenden Reaktionspartners erlaubt. Weiterhin kann mit einem Enzym markiert werden. Es wird dann nach Durchführung der üblichen Schritte der Immunbestimmung ein Substrat für das Enzym, das als Markierung verwendet wird, zugegeben und dann über dessen Reaktion die Konzentration des zu bestimmenden Reaktionspartners berechnet. Eine weitere Möglichkeit ist die Markierung mit einer fluoreszierenden Substanz, wobei die Fluoreszenz dann direkt bestimmt werden kann oder mit einem Farbstoff, wobei die Auswertung spektro- oder photometrisch erfolgt. Immunassays weisen wachsende Bedeutung auf, da sie eine sehr grosse Empfindlichkeit haben und mit Hilfe dieser Methode Substanzen bis in den Picogrammbereich erfasst werden können. Immunbestimmungen in heterogener Phase werden jedoch in unterschiedlichem Ausmass durch nicht Analyt-spezifische Interferenzen, sogenannte unspezifische Störungen, verfälscht, die schon als Matrixeffekt", "Background" und unspezifische Bindung bezeichnet wurden. Besonders störend macht sich bemerkbar, dass die Wiederfindung der zu bestimmenden Substanz bei Plasmaproben deutlich geringer als bei Serumproben ist. Diese unspezifischen Störungen sind teilweise auf unbekannte Probenbestandteile zurückzuführen. Ebenso kann sich die Empfindlichkeit der Immunbestimmung durch unspezifische Wechselwirkungen der Störfaktoren mit den eingesetzten Immunreagenzien oder mit dem Analyten verschlechtern. Es konnte festgestellt werden, dass unspezifische Störungen bei Immunbestimmungen im Plasma stärker auftreten als bei Immunbestimmungen im Serum. Deshalb ist auch die Wiederfindung bei Bestimmungen im Plasma wesentlich geringer als im Serum, während bei kompetitiven Tests die Wiederfindung im Plasma zu hoch ist. Die Ursache dieser Störung wurde daher auf die Gerinnungsproteine, die im Plasma noch vorhanden sind, im Serum jedoch nicht, zurückgeführt. Die Gerinnungsproteine lagern sich an die Oberfläche des Trägermaterials an und behindern damit die Antigen-Antikörper-Reaktion bzw. die Antigen-Konjugatreaktion. Es war bisher bekannt, zur Verringerung unspezifischer Wechselwirkungen bei Immunbestimmungen dem Inkubationsmilieu bestimmte Detergenzien zuzusetzen. Ein Nachteil dieser Methode besteht jedoch darin, dass auch die erwünschte, d. h. die analytspezifische Antigen-Antikörper-Reaktion in ihrem Ausmass beeinflusst wird, woraus wiederum eine Abnahme der Empfindlichkeit resultiert. Ausserdem trat bei der bekannten Anwendung von Detergenzien das Problem auf, dass bei Solid-phase- Immunoassays die oberflächenaktive Substanz das adsorptiv gebundene Molekül von der festen Oberfläche verdrängen konnte. Die Funktion des Immunoassays wird dadurch entscheidend beeinträchtigt. So war bekannt, dass Detergenzien wie Tween 20 im Inkubationspuffer die Plasmagängigkeit herstellen. Detergenzien dieser Art haben jedoch den Nachteil, dass sie in Konzentrationen, die höher sind als 0,01 %, den an das Trägermaterial gebundenen Reaktionspartner ablösen, was wiederum zu einer negativen Beeinflussung der Immunbestimmung führt. Es war nun ein Ziel der Erfindung, ein Verfahren zu finden, bei dem nicht analytspezifische und daher unerwünschte unspezifische Störungen bei Immunbestimmungen in heterogener Phase unterdrückt werden. Ferner war es ein Ziel, ein derartiges Verfahren zu finden, bei dem weder die Reaktion zwischen Antikörper und Antigen/fIapten beeinträchtigt wird, noch adsorptiv gebundene Reaktionsteilnehmer von dem Träger desorbiert werden, noch, wenn als Markierung enzymmarkierte Immunreagenzien verwendet werden, die enzymatische Aktivität reduziert wird. Ein weiteres Ziel der Erfindung ist auch eine Beschleunigung der Immunreaktion und damit eine Verkürzung der Analysendauer. Zur Erreichung dieser Ziele schlägt die Erfindung ein Verfahren zur Bestimmung eines Partners einer Immunreaktion nach dem Immunoassay-Prinzip bei einer Temperatur zwischen 15 und 400C vor, wobei einer der Reaktionspartner in fester Phase vorliegt, das dadurch gekennzeichnet ist, dass man dem Inkubationsmedium der Immunreaktion ein oberflächenaktives Mittel mit einem HLB-Wert von mehr als 20 zusetzt. Uberraschenderweise wurde festgestellt, dass Detergenzien mit einem HLB-Wert, der grösser ist als 20, unerwünschte Reaktionen bei Immunbestimmungen unterdrücken können und gleichzeitig weder die Reaktion zwischen Antikörper und Antigen bzw. Hapten beeinträchtigen, noch eine Desorption der adsorptiv gebundenen Reaktionspartner bewirken. Auch eine Beeinflussung der Enzymaktivität wurde nicht festgestellt. Darüberhinaus führt der Zusatz des erfindungsgemässen Mittels zu einer Beschleunigung der Immunreaktion. Bevorzugt werden als oberflächenaktive Mittel mit einem IILB-Wert über 20 nichtionische Blockcopolymere Tenside auf Basis von Alkylenoxiden mit 2 bis 4 C-Atomen, die gegebenenfalls als Zentralmolekül ein Alkylendiamin mit 2 bis 4 C-Atomen enthalten können, eingesetzt. Bevorzugte Blockcopolymere sind Verbindungen der allgemeinen Formel I EMI6.1 bei denen a einen Wert zwischen 30 und 150 und besonders bevorzugt zwischen 60 und 100 und b einen Wert zwischen 15 und 60 und besonders bevorzugt zwischen 25 und 40 annehmen kann. Diese Verbindungen werden auch als Poloxamere bezeichnet. Eine Handelsbezeichnung ist R z. B. Pluronic Bei der Gruppe der Poloxamere haben sich als besonders geeignet Verbindungen erwiesen, die einen Anteil an hydrophilem Polyoxyethylen im Gesamtmolekül von 60 bis 90 % haben. Weiterhin bevorzugt sind Blockcopolymere mit der allgemeinen Formel II EMI6.2 die als Poloxamine bezeichnet werden, worin x die Werte 10 bis 50, besonders bevorzugt 15 bis 30 und y die Werte 30 bis 150, besonders bevorzugt 40 bis 120 annehmen kann, verwendet. Eine Handelsbezeichnung für solche Poloxamine ist z. B. TetronicR. Unter den obengenannten oberflächenaktiven Mitteln werden solche am meisten bevorzugt, deren HLB-Wert zwischen 24 und 30 liegt. Die oberflächenaktive Substanz wird in einer Menge von 0,1 bis 5%, bezogen auf das Gewicht des gesamten Reaktionsansatzes, eingesetzt. Besonders bevorzugt werden bei dem Verfahren der vorliegenden Erfindung Poloxamine mit einem Anteil an hydrophilen Polyovcyethylengruppen von 50 bis 90% verwendet. Der Zusatz des oberflächenaktiven Mittels gemäss der Erfindung bringt sowohl Vorteile beim Zusatz zu Plasma als auch beim Zusatz zu Serum. In beiden Fallen tritt eine Beschleunigung der Reaktion auf sowie eine Verhinderung der unspezifischen Störungen, insbesondere bei den hierfür besonders anfälligen Bestimmungen im Plasma. Das erfindungsgemässe Verfahren ist auf alle Plasmaarten anwendbar. So kann es sowohl für Plasma, das zur Stabilisierung mit EDTA versetzt wurde, als auch für Plasma, das mit Heparin oder Citrat versetzt wurde, verwendet werden. Der Zusatz des oberflächenaktiven Mittels kann bei jeder für die Bestimmung verwendeten Lösung erfolgen. Bei einem zweistufigen Verfahren werden besonders gute Ergebnisse erhalten, wenn beiden Puffern, also für jede der beiden Stufen, das Detergenz zugesetzt wird. Dazu wird die feste Phase, die den einen Reaktionspartner trägt, zuerst mit einer ersten Inkubationslösung behandelt, die Puffer und Zusatzstoffe, wie z. B. IgG enthält. Danach wird gewaschen und anschliessend in einer zweiten Stufe die Konjugatlösung zugesetzt und erneut inkubiert. Die Konjugatlösung enthält Konjugat und Puffer sowie gegebenenfalls weitere übliche Zusätze. Das Konjugat selbst besteht aus einem immunologischen Reaktionspartner für die zu bestimmende Substanz oder für den Festphasenpartner, z. B. einem Antikörper gegen das zu bestimmende Antigen in markiertem Zustand. Die Probelösung wird dabei zweckmässig in den Inkubationspuffer gegeben. Gute Ergebnisse werden aber auch dann erzielt, wenn der Zusatz der oberflächenaktiven Substanz zur Inkubationslösung oder zur Konjugatlösung erfolgt. Der Zusatz des oberflächenaktiven Mittels zur Probelösung selbst ist weniger günstig. In der fertigen Inkubationslösung muss ja eine ausreichend hohe Konzentration desselben vorliegen. Wenn nun das Mittel über die Probelösung zugegeben wird, die in nur sehr geringer Menge verwendet wird, muss die Konzentration an oberflächenaktivem Mittel darin sehr hoch sein. Bei sehr hohen Konzentrationen könnten jedoch unerwiinschte Wirkungen auftreten. Zur Durchführung des erfindungsgemässen Verfahrens wird ein Reagenz verwendet, das mobilisierte und immobilisierte Partner der Immunreaktion enthält und dadurch gekennzeichnet ist, dass es ein oberflächenaktives Mittel mit einem HLB-sXert von mehr als 20 enthält. Dieses Reagenz kann ausserdem noch an sich übliche Inhaltsstoffe enthalten. Zweckmässig enthält es noch Puffersubstanzen, beispielsweise Phosphatpuffer, Citratpuffer, Boratpuffer und dergleichen oder/und Rinderserumalbumin oder/und Konservierungsmittel. Wird als Markierung bei der Immunreaktion ein Enzym verwendet, so enthält das Reagenz noch ein System zum Nachweis der Enzymaktivität. Vorzugsweise enthält das Reagenz als oberflächenaktives Mittel ein nichtionisches Blockcopolymeres auf Basis von Alkylenoxiden mit 2 bis 4 C-Atomen, die gegebenenfalls ein Alkylendiamin mit 2 bis 4 C-Atomen als Zentralmolekül enthalten. Besonders bevorzugt enthält es als oberflächenaktives Mittel eine Verbindung der allgemeinen Formel I oder II mit den für die Indices a, b, x und y angegebenen Bereichen. Besonders bevorzugt werden oberflächenaktive Mittel mit einem HLB-Wert zwischen 26 und 30 verwendet. Das oberflächenaktive Mittel ist in dem Reagenz in einer Konzentration von 0,1 bis 5 % enthalten. Mit dem erfindungsgemässen Verfahren und Reagenz gelingt es die Wiederfindung bei Immunbestimmungen in heterogener Phase zu verbessern. Durch den Zusatz des erfindungsgemäss verwendeten Mittels wird ferner die Immunreaktion beschleunigt. Darüberhinaus werden unerwünschte Nebenreaktionen unterdrückt wie insbesondere die unspezifische Anlagerung von Konjugat an die feste Phase, ohne dass es zu einer verstärkten Ablösung der gebundenen Reaktionspartner kommt. Beispiel 1 Es wurden Kunststoffröhrchen mit Antikörper gegen TSH, die mittels der Chloramin-T-Methode mit 125 J markiert waren, in Phosphatpuffer mit 40 mmol/l bei einem pH 7,4 beladen. Die Konzentration war 2 ssg/ml. Nachbeladen wurde mit einer Lösung aus 0,9 % Natriumchlorid und 0,3 % Rinderserumalbumin, Typ II. Das Beladevolumen lag bei 1,5 ml. Die Inkubationszeit für die Beladung betrug 22 Stunden. Danach wurde mit 1,8 ml einer Nachbeladelösung 1/2 Stunde lang nachbeladen. Die Röhrchen wurden 24 Stunden getrocknet mit der Röhrchenöffnung nach oben. Die Röhrchen wurden dann mit Detergenz behandelt. Bei diesen Röhrchen wurde dann die Desorption des Antigens bzw. des Antigen-Antilcörper- Komplexes gemessen. Die Ergebnisse sind der folgenden Tabelle I zu entnehmen. Tabelle 1 EMI11.1 <tb> <SEP> Konzen- <SEP> Desorption <tb> Detergenz <SEP> tration <SEP> Wand-AK <SEP> Antigen <tb> Pufferlösung <SEP> - <SEP> 3,2 <SEP> % <SEP> 1,2 <SEP> % <tb> Tween <SEP> 20 <SEP> (V) <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 58 <SEP> % <SEP> 74 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,1 <SEP> % <SEP> 50 <SEP> % <SEP> 65 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,01 <SEP> % <SEP> 30 <SEP> % <SEP> 45 <SEP> % <tb> Triton <SEP> X <SEP> 100 <SEP> (V) <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 61 <SEP> % <SEP> 85 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,1 <SEP> % <SEP> 62 <SEP> % <SEP> 89 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,01 <SEP> % <SEP> 53 <SEP> % <SEP> 78 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> L <SEP> 64 <SEP> (V) <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 64 <SEP> % <SEP> 85 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,1 <SEP> % <SEP> 21 <SEP> % <SEP> 39 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,01 <SEP> % <SEP> 6 <SEP> % <SEP> 10 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 68 <SEP> (E) <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 9 <SEP> % <SEP> 7 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,1 <SEP> % <SEP> 5 <SEP> % <SEP> 6 <SEP> % <tb> <SEP> " <SEP> 0,01 <SEP> % <SEP> 5 <SEP> % <SEP> 5 <SEP> % <tb> Tetronic <SEP> 707 <SEP> (E) <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 5 <SEP> % <SEP> <tb> " <SEP> 0,1 <SEP> % <SEP> 4 <SEP> % <SEP> <tb> <SEP> " <SEP> 0,01 <SEP> % <SEP> 4 <SEP> % <SEP> V = Vergleich, oberflächenaktives Mittel mit HLB ( 20 E = erfindungsgemässes oberflächenaktives Mittel mit HLB > 20. Beispiel 2 Es wurde die Wiederfindung im TSH-Test bei Verwendung verschiedener Detergenzien überprüft. Dazu wurde mit EDTA, mit Heparin bzw. mit Citrat stabilisiertes Plasma verwendet. Gleichzeitig wurde der TSH-Test mit Serum durchgeführt. Bei diesem Test war die Wiederfindung 100 %. Die für verschiedene Detergenzien erhaltenen Werte sind der folgenden Tabelle zu entnehmen: : Tabelle 2 EMI13.1 <tb> <SEP> Detergenzkonzentration <SEP> Wiederfindung <tb> <SEP> Inkubations- <SEP> Konjugat- <SEP> EDTA <SEP> Heparin <SEP> Citrat <tb> Detergenz <SEP> puffer <SEP> puffer <SEP> Plasma <SEP> Plasma <SEP> Plasma <SEP> <tb> ohne <SEP> - <SEP> - <SEP> 40-70 <SEP> 40-70 <SEP> <tb> Triton <SEP> X <SEP> 405 <SEP> 0,1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 66 <SEP> % <SEP> 81 <SEP> % <SEP> <tb> Tween <SEP> 20 <SEP> 0,005 <SEP> % <SEP> - <SEP> 88 <SEP> % <SEP> 89 <SEP> % <SEP> 89 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 68 <SEP> 1 <SEP> 9s <SEP> - <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 97 <SEP> % <SEP> 93 <SEP> % <tb> <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 105 <SEP> 8 <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 99 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 87 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 99 <SEP> % <SEP> 105 <SEP> % <SEP> 100 <SEP> % <tb> <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 106 <SEP> % <SEP> 100 <SEP> % <SEP> 112 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 88 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 106 <SEP> % <SEP> 93 <SEP> % <SEP> <tb> <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 103 <SEP> % <SEP> 92 <SEP> % <SEP> <tb> <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 105 <SEP> % <SEP> 104 <SEP> % <SEP> 105 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 98 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 99 <SEP> % <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 102 <SEP> % <tb> " <SEP> - <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 99 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 127 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 103 <SEP> % <SEP> 98 <SEP> % <SEP> <tb> <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 101 <SEP> % <SEP> 95 <SEP> % <SEP> - <SEP> <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 38 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 102 <SEP> % <SEP> 86 <SEP> 9s <SEP> 94 <SEP> % <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 108 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> | <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 105 <SEP> % <SEP> 92 <SEP> % <SEP> 101 <SEP> 96 <SEP> <tb> Tetronic <SEP> 707 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 100 <SEP> % <SEP> 97 <SEP> % <SEP> 105 <SEP> % <tb> <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 94 <SEP> % <SEP> 102 <SEP> % <tb> " <SEP> - <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 96 <SEP> % <SEP> 83 <SEP> % <SEP> 96 <SEP> % <tb> Tetronic <SEP> 908 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 94 <SEP> % <SEP> 100 <SEP> % <tb> <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 97 <SEP> % <SEP> 94 <SEP> % <SEP> 99 <SEP> % <tb> Tetronic <SEP> 909 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 90 <SEP> % <SEP> 84 <SEP> % <SEP> 95 <SEP> % <tb> <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 98 <SEP> % <SEP> 96 <SEP> % <SEP> 101 <SEP> % <tb> Tetronic <SEP> 1107 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 110 <SEP> % <SEP> 103 <SEP> % <SEP> - <SEP> <tb> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 105 <SEP> % <SEP> 99 <SEP> % <SEP> <tb> Tetronic <SEP> 1307 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> - <SEP> 105 <SEP> % <SEP> 96 <SEP> % <SEP> <tb> 1 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 107 <SEP> % <SEP> 103 <SEP> % <SEP> Serumwert = 100 % Analoge Versuche wurden auch im CEA-Test durchgeführt. Die Ergebnisse entsprachen denen im TSH-Test. Es konnte festgestellt werden, dass bei steigenden Konzentrationen an oberflächenaktivem Mittel nicht nur die Wiederfindung im Plasma steigt, sondern auch die Extinktion des Nullstandards erniedrigt wird. Das bedeutet, dass die unspezifische Konjugatbindung durch den Zusatz des oberflächenaktiven Mittels verringert wird. Beispiel 3 Um den Einfluss von verschiedenen Detergenzien auf die unspezifische Bindung von Konjugat zu zeigen, wurden verschiedene oberflächenaktive Mittel getestet. Die Ergebnisse sind der folgenden Tabelle 3 zu entnehmen. Tabelle 3 EMI14.1 <tb> Detergenz <SEP> Konzentration <SEP> Ext, <SEP> O-Standard <tb> ohne <SEP> - <SEP> 68 <SEP> mE <tb> Tetronic <SEP> 707 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 43 <SEP> mE <tb> " <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 26 <SEP> mE <tb> Tetronic <SEP> 908 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 10 <SEP> mE <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 68 <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 22 <SEP> mE <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 88 <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 18 <SEP> mE <tb> I3eispiel 4 Es wurde geprüft, inwieweit das erfindungsgemäss verwendete oberflächenaktive Mittel den TSH-Test beschleunigen kann, ohne dass die Extinktion des Nullstandards sich erhöht. Dazu wurden verschiedene oberflächenaktive Mittel getestet. Die Ergebnisse sind der beigefügten Abbildung zu entnehmen. Beispiel 5 Es wurden mehrere TSH-Tests durchgeführt. Dabei wurde die Beschleunigung, bezogen auf einen Standard, bestimmt, die mit den erfindungsgemäss verwendeten Mitteln erreicht werden kann. Die in der folgenden Tabelle 4 aufgeführten Werte wurden dabei mit den verschiedenen oberflächenaktiven Mitteln erhalten. Tabelle 4 EMI16.1 <tb> oberflächenaktives <SEP> | <SEP> Konz. <SEP> Standard <tb> <SEP> Mittel <SEP> % <SEP> AE <SEP> % <SEP> <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 68 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 0,847 <SEP> 100,5 <tb> <SEP> 2 <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 0,926 <SEP> 110 <tb> <SEP> 5 <SEP> 5 <SEP> % <SEP> 1,238 <SEP> 147 <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 88 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 0,775 <SEP> 114 <tb> n <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 0,762 <SEP> 112 <tb> <SEP> 5 <SEP> 5 <SEP> % <SEP> 1,002 <SEP> 147 <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 98 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 0,831 <SEP> 118 <tb> <SEP> 2 <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 0,789 <SEP> 112 <tb> n <SEP> 5 <SEP> % <SEP> 1,213 <SEP> 172 <tb> Pluronic <SEP> F <SEP> 38 <SEP> 1 <SEP> % <SEP> 0,697 <SEP> 102 <tb> <SEP> 2 <SEP> 2 <SEP> % <SEP> 0,695 <SEP> 102 <tb> <SEP> " <SEP> 5 <SEP> % <SEP> 0,627 <SEP> 92 <tb>

Claims: Process for the determination of a partner of an immune reaction according to the immunoassay principle at a temperature between 15 and 40°C. in the presence of a surface-active agent, whereby one of the reaction partners is present in solid phase, characterised in that, as surface-active agent, one adds non-ionic block polymers based on alkylene oxides with 2 to 4 C-atoms, which possibly contain an alkylenediamine with 2 to 4 C-atoms as central molecule, with an HLB value of more than 20 in an amount of 0.1 to 2 wt.%, referred to the weight of the reaction batch. Process according to claim 1, characterised in that the determination is carried out in a plasma sample. Process according to one of claims 1 or 2, characterised in that one uses surface-active agents with an HLB value between 24 and 30. Process according to one of claims 1 to 3, characterised in that, as surface-active agents, one uses compounds of the formula I wherein a can have a value between 30 and 150 and b a value between 15 and 60. Process according to claim 4, characterised in that one uses block co-polymer in which a has a value between 60 and 100 and b a value between 25 and 40. Process according to one of claims 3 to 5, characterised in that one uses block co-polymers which have a proportion of hydrophilic polyoxyethylene groups of 60 to 90%. Process according to any of claims 1 to 3, characterised in that, as surface-active agents, one uses compounds with the following formula II wherein x can have a value between 10 and 50 and y a value between 30 and 150. Process according to claim 7, characterised in that one uses block co-polymers in which x has a value between 15 and 30 and y a value between 40 and 120. Process according to one of claims 7 or 8, characterised in that the proportion of polyoxyethylene groups amounts to 50 to 90%. Process according to one of the preceding claims, characterised in that the surface-active agent is introduced together with the incubation solution. Reagent for the carrying out of a process according to one of claims 1 to 10, containing mobilised and immobilised partners of an immune reaction, as well as a surface-active agent, characterised in that, as surface-active agent, it contains non-ionic block co-polymers based on alkylene oxides with 2 to 4 C-atoms which optionally contain an alkylenediamine with 2 to 4 C-atoms as the central molecule, with an HLB value of more than 20, in an amount of 0.1 to 2 wt.%. Reagent according to claim 11, characterised in that the surface-active agent has an HLB value between 24 and 30. Reagent according to one of claims 11 or 12, characterised in that the surface-active agent is a compound of the formula I wherein a has a value between 30 and 150, preferably between 60 and 100, and b has a value between 15 and 60, preferably between 25 and 40. Reagent according to claim 13, characterised in that the compound has a proportion of polyoxyethylene groups of 60 to 90%. Reagent according to one of claims 11 or 12, characterised in that the surface-active agent is a compound with the general formula II wherein x has a value between 10 and 50, preferably between 15 and 30, and y has a value between 30 and 150, preferably between 40 and 120. Reagent according to claim 15, characterised in that the compound has a proportion of polyoxyethylene groups of 50 to 90%. Reagent according to one of claims 11 to 16, characterised in that it also contains a system for the detection of an enzyme activity used as labelling.

Inventors: DEEG, ROLF, DR. RER. NAT., KLEINHAMMER, GERD, DR. RER. NAT., SCHMITT, URBAN
Applicants: BOEHRINGER MANNHEIM GMBH
Application year: 1986
Main classification: G01N33
IPC codes: G01N33