PULMONARY SURFACTANT, PROCESS FOR ITS PREPARATION AND ITS PHARMACEUTICAL USE

Abstract: 1. Lung surfactant, obtainable by (A) (A1) extraction of comminuted lung tissue or of an aqueous lung extract prepared with an isotonic solution of an electrolyte or of a mono- or disaccharide with a water-immiscible lipid solvent, (A2) separating off of undissolved components from the extract, (A3) separating off of the lipid solvent, (A4) extraction with a water-soluble alcohol, (A5) separating off of alcohol-insoluble components from the extract and (A6) separating off of the alcohol and obtaining of the active material or (B) (B1) centrifuging off the cell fragments from an aqueous lung extract prepared with an isotonic solution of an electrolyte or of a mono- or disaccharide at relatively low centrifugal accelerations, (B2) bringing into contact of the extract with an insoluble adsorbent, (B3) washing of laden adsorbent with water or acetone with removal of non-adsorbed material, (B4) desorption of the active material with an organic solvent or a solvent mixture and (B5) separating off of the solvent or solvents with obtaining of the active material.

Description: Lungen-SurfactanY', Verfahren zu seiner Her stellung und seine pharmazeutische Verwen dung Die Erfindung bezieht sich auf eine Lungen Surfactantpräparation, Verfahren zu seiner Herstellung sowie pharmazeutische Mittel, die sich insbesondere zur Behandlung des durch Surfactantmangel in der Lunge bedingten Atemnotsyndroms bei Patienten mit entweder noch nicht ausgebildeter oder pathologisch veränderter Surfactantschicht. Als Ausgangsmaterial werden Lungen von Säugetieren herangezogen. Der von den Alveolarzellen des Typs II gebildete Wirkstoff kann zur kausalen Therapie des durch Surfactantmangel bedingten Atemnotsyndroms eingesetzt werden. Die Hyalinmembran-Erkrankung (HMD) beruht auf einem Mangel an Alveolar-Surfactant in der Lunge und bedingt dadurch die Ausbildung von Atelektasen. Eine medikamentöse und kausale Behandlungsmöglichkeit wird in der Verabreichung von Lungen-Surfactant in die Trachea gesehen. Tierexperimentelle und erste klinische Versuche an Neugeborenen wurden sowohl mit natürlichem Surfactant als auch mit dessen Hauptbestandteil Dipalmityllecithin, vorwiegend in Kombination mit Phosphatidylglycerol, durchgeführt. Das natürliche Surfactant wird von einigen Autoren (Morley, C.N., et al., The Lancet 1 (1981) 64 - 68) wegen ungenügender und stark variierender Aktivität als für einen therapeutischen Einsatz ungeeignet angesehen. Es wurde bereits ein halbsynthetisches Surfactant entwickelt, das aus einem Gemisch von natürlich vorkommendem Surfactant aus Säugerlungen und synthetischen Phospholipiden besteht. An 10 unreifen Frühgeborenen mit HMD wurden gute Behandlungserfolge erzielt (Fujiwara, T., et al., The Lancet 1 (1980) 55 - 59). Die Gewinnung von Lungen-Surfactant kann aus Lungenhomogenisat (V. Neergard, K., Verh. Dtsch. Ges. Inn. Med. 41 (1929) 249; Clements, J.A., Proc. Sec. exp. Biol. (N. Y.) 95 (1957) 170), durch pervasale Ausspülung (Bondurant, S., Miller, D.A., J. Appl. Physiol. 17 (1962) 167) oder broncheale spülung (Clements, J.A., Proc. Soc. exp. Biol. (N.Y.) 95 (1957) 170) erfolgen. Für eine therapeutische Nutzung des Wirkstoffs kommt nur die Isolierung aus stark zerkleinertem Lungengewebe in Betracht. Der dabei gewonnene Extrakt enthält allerdings nicht nur die Komponenten des grenzflächenaktiven Systems, sondern auch, in Abhängigkeit von den angewandten Extrak tionsbedingungen, lösliche und emulgierbare-Bestandteile der Lunge und des in der Lunge enthaltenen Bluts. Eine Möglichkeit zur Gewinnung dieses grenzflä- chenaktiven Materials zur Behandlung der HMD ist in der DE-OS 30 21 006 beschrieben. Durch Elektrolytlösung wird aus Säugerlunge ein rohes Material gewonnen, dem zur Erreichung eines Phospholipidgehalts von 75 bis 95,5 t die erforderliche Menge synthetisches Phospholipid zugesetzt wird. Der Proteingehalt beträgt 0,5 bis 5,0 t. Nach dem Abzentrifugieren von Zellfragmenten bei einer Drehzahl von 500 bis 1500 min 1 wird das rohe Wirkstoffgemisch durch Zentrifugieren bei einer Drehzahl -1 von 12000 bis 16000 min 1 und O bis 10 C als Sediment erhalten. Die weitere Aufarbeitung erfolgt durch mehrfache Wiederaufnahme der Lipide in Natriumchloridlösung und Abtrennung durch hochtouriges Zentrifugieren. Nach Dialyse, Extraktion mit Aceton und Aufnahme der Phospholipide in einem Chloroform-Methanol-Gemisch sowie Abdampfen des Lösungsmittels wird ein Wirkstoffgemisch erhalten, dem dann in Bezug auf den Phosphatgehalt m molaren Verhältnis 1:0,65:0,12 Dipalmityllecithin und Phosphatidylglycerol zugesetzt werden. Auch andere in der Literatur beschriebene Verfahren (Brown, E. S., et al., J. Appl. Physiol. 14 (1959) 717; Jobe, A., Biochem. Biophys. Acta 489 (1977) 440 - 453; King, R. J., Clements, J.A., Am. J. Physiol. 223 (1972) 707 - 714; Bergen, P., et al., Ircs Med. Sci. 9 (1981) 283-284) zur Gewinnung von natürlichem Surfactant basieren auf der Extraktion oder dem Spülen von Säugerlunge mit Elektrolytlösungen und der anschliessenden Trennung durch mehrfaches Zentrifugieren bei unterschiedlichen relativen Zentrifugalbeschleunigungen und Temperaturen, wobei die Abtrennung der Phospholipide die Anwendung hoher relativer Zentrifugalbeschleunigungen und Dichtegradienten erfordert, was bei der Massstabsvergrösserung einen erheblichen Aufwand mit sich bringt. Die Gewinnung eines Roh-Surfactans durch Extraktion von Hunde- und Kaninchenlunge mit isotonischer NatriumchloridlösunB und anschliessendes mehrstufiges Zentrifugieren ist ebenfalls versucht worden. (Scarpelli > E.M., et al., J. Appl. Physiol. 23 (1967) 880-886). Für analytische Zwecke wurden die Bestandteile des Surfactants durch Gelfiltration an Sephadex ) G 200 getrennt. Aufgrund der unterschiedlichen Partikelgrössen und der grenz flächenaktiven Eigenschaften führt die Gelfiltration zu hohen Materialverlusten und erscheint schon deshalb für präparative Zwecke nicht geeignet. Ein synthetisches Lungen-Surfactant aus einem Gemisch von Dipalmityl-Lecithin und Phosphatidylglycerol im Verhältnis 7:3 erwies sich bei Neugeborenen mit HMD als nicht ausreichend wirksam (Morley, C.J., et al., The Lancet 1 (1981) 64-68. Die Herstellung eines synthetischen, proteinfreien Surfactants aus Dipalmityllecithin und Hexadecanol ist ferner in der US-PS 43 12 600 beschrieben. Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, eine Lungen-Surfactantpräparation und ihre Herstel lung sowie entsprechende pharmazeutische Mittel mit diesem Lungen-Surfactant als Wirkstoff anzu geben, mit dem eine Substitutionstherapie des bei Surfactantmangel in der Lunge auftretenden Atemnotsyndroms möglich ist. Das Herstellungsver fahren soll dabei einfach im grosstechnischen Mass stab mit leicht zugänglichen Hilfsstoffen auf der Basis natürlicher Rohstoffe durchführbar sein. Die Aufgabe wird anspruchsgemäss gelöst. Vor teilhafte Weiterbildungen sind Gegenstand der Unter ansprüche. Das erfindungsgemässe Verfahren zur Herstellung des Lungen-Surfactants ist gekennzeichnet durch (A) (Al) Extraktion von zerkleinertem Lungengewebe oder eines wässrigen, mit einer isotonischen Lösung eines Elektrolyts oder eines Mono oder Disaccharids hergestellten Lungenextrakts mit einem nicht mit Wasser mischbaren Lipid lösungsmittel, (A2) Abtrennung ungelöster Bestandteile aus dem Extrakt, (A3) Abtrennung des Lipidlösungsmittels, (A4) Extraktion mit einem wasserlöslichen Alkohol, (A5) Abtrennung alkoholunlöslicher Bestandteile aus dem Extrakt und (A6) Abtrennung des Alkohols und Gewinnung des Wirkstoffs oder (B) (B1) Abzentrifugieren der Zellfragmente aus einem wässrigen, mit einer isotonischen Lösung eines Elektrolyts oder eines Mono- oder Disaccharids hergestellten Lungenextrakts bei niederen relativen Zentrifugalbeschleu nigungen, (B2) Inkontaktbringen des Extrakts mit einem un löslichen Adsorbens, (B3) Waschen des beladenen Adsorbens mit Wasser oder Aceton unter Entfernung von nicht adsorbiertem Material, (B4) Desorption des Wirkstoffs mit einem organischen Lösungsmittel oder einem Lösungsmittelgemisch und (B5) Abtrennung des bzw der Lösungsmittel unter Ge winnung des Wirkstoffs. Die erfindungsgemässe Lungen-Surfactantpräparation ist entsprechend nach diesem Verfahren erhältlich. Die pharmazeutischen Mittel enthalten dieses Lungen-Surfactant neben üblichen Hilfs- und/oder Trägerstoffen. Der Träger ist dabei vorzugsweise flüssig, wobei bevorzugt physiologische Flüssig keiten bzw Lösungen verwendet werden, und galenisch so formuliert, dass das Mittel über die Atemwege verabreicht werden kann. Mit dem erfindungsgemäss zugänglichen, dem natürlichen entsprechenden Lungen-Surfactant spezieller Zusammensetzung ist eine kausale Therapie aller Erkrankungen möglich, die mit einer Veränderung des pulmonalen Surfactants einhergehen, insbesondere des Atemnotsyndroms bei Neugeborenen und Erwachsenen. Solche Therapeutica besitzen ausserordentliche medizinische und humanitäre Bedeutung, vor allem im Hinblick auf die Verringerung der Säuglingssterblichkeit bei Neugeborenen, deren Surfactantschicht noch nicht ausgebildet ist, sowie die Notfalltherapie bei Patienten, deren Lungen-Surfactant durch pathologische Vorgänge geschädigt worden ist. Die Erfindung beruht auf der überraschenden Feststellung, dass der phospholipidreiche und proteinhaltige Surfactant-Komplex aus dem wässrigen Extrakt von zerkleinerter Säugetierlunge oder der wässrigen Phase der Lunge selbst in ein einheitliches, nicht mit Wasser mischbares Lipidlösungsmittel, wie z.B. Chloroform, Dichlormethan, Tetrachlormethan oder Petrolether, übergeführt werden kann, ohne dabei seine biologische Wirksamkeit zu verlieren. Ein grosser Teil von störenden Zellbestandteilen, insbesondere Proteine, fällt dabei aus und kann leicht abgetrennt werden. Das bisher zum Lösen des Surfactant hauptsächlich für analytische Zwecke verwendete Extraktionsmittel nach Folch (Chloroform/Methanol im Volumenverhältnis 2:1) wird somit durch- ein einheitliches Lipidlösungsmittel ersetzt, wobei ein Alkoholanteil vermieden ist. Bevorzugt werden Chloroform, sowie andere halogenierte Kohlenwasserstoffe. Hierdurch kann wiederum die bei den bisher üblichen Laborverfahren angewandte Vielzahl von Zentrifugierschritten, zum Teil bei sehr relativer Zentrifugalbeschleunigung und unter Anwendung von Dichtegradienten, vermieden werden. Der Wegfall eines Alkoholzusatzes zum Lösungsmittel hat den Vorteil einer erheblichen Reduzierung des Proteinanteils, der infolge seiner Artfremdheit bei der Verabreichung solcher Präparate an Menschen zu allergischen Reaktionen führen kann (Bergmann, K.-Ch., Lachmann, B., Z. Erkr. Atm. 137 (1972) 55-60; Morley, C.N., et al., The Lancet, 10 (1981) 64-68). Andererseits geht der zur Entfaltung der Wirksamkeit notwendige, jedoch geringe Lipoproteinanteil bei der erfindungsgemässen Extraktion in die Lösungsmittelphase über. Darüber hinaus erleichtert die Anwendung eines einheitlichen Lipidlösungsmittels die Rückgewinnung des Lösungsmittels durch Redestillation gegenüber der Verwendung eines Gemisches verschiedener Lösungsmittel und trägt somit erheblich zur Verbesserung der Wirtschaftlichkeit des Verfahrens bei. Bei der Durchführung des erfindungsgemässen Verfahrens wird die Säugetierlunge, vorwiegend Rinder- oder Schweinelunge, von Tettgewebe und Trachearesten befreit und z.B. mit einem Fleischwolf zerkleinert. Der so erhaltene Brei aus Lungengewebe wird entweder sofort mit einem Lipidlösungsmittel, wie Chloroform oder einem anderen halogenierten Kohlenwasserstoff, ausgerührt.Alternativ kann von dem Brei aus Lungengewebe ein wässriger Extrakt, vorteilhafterweise mit isotonischen Elektrolytund Zuckerlösungen, hergestellt werden, der mit einem Lipidlösungsmittel, wie Chloroform oder einem anderen halogenierten Kohlenwasserstoff, ausgerührt wird. Die direkte Extraktion der Lunge mit einem Lipidlösungsmittel, wie halogenierten Kohlenwasserstoffen, führt man mit 0,5 bis 10 1 Lösungsmittel und vorteilhaft 1,5 1 Lösungsmittel pro Kilogramm Lungengewebe durch. Die Herstellung eines wässrigen Extrakts erfolgt mit 0,1 bis 0,5 kg Lungengewebe pro Liter Lösung; die Extraktion des Surfactants aus 1 1 dieser Lösung ist mit 0,1 bis 2,0 1 und vorteilhafterweise 0,25 1 Lipidlösungsmittel, vorzugsweise halogenierten Kohlenwasserstoffen,möglich. Die Lungenrückstände werden jeweils durch Filtration über Gaze von den Extrakten getrennt; die nach der Chloroformbehandlung des wässrigen Extrakts ausgefallenen Proteine werden vorteilhaft durch Zentrifugieren abgetrennt. Die erhaltene Lipidlösungsmittelphase wird nach Klärung durch Filtration bei 40 OC im Vakuum aufkonzentriert; anschliessend kann das Lösungsmittel durch Stickstoffeinleitung bei 40 "C völlig ausgetrieben werden, so dass eine pastose, gelblichbräunliche Substanz zurückbleibt. Ihr Phospholipidgehalt beträgt bei direkter Chloroformextraktion 20 bis 50 s, überwiegend 30 bis 40 Oo, und bei Zwischenschaltung der wässrigen Extraktion 30 bis 75 , überwiegend 50 bis 60 s. Der Proteingehalt des so erhaltenen, biologisch bereits gut wirksamen Rohsurfactants liegt bei direkter Chloroformextraktion zwischen 0,8 und 1,5 z und bei Zwischenschaltung der wässrigen Extraktion unter 1 , überwiegend bei 0,5 t. Das gewonnene Surfactant wird dann einer anschliessenden Alkoholextraktion unterworfen. Dazu wird das rohe Surfactant im Temperaturbereich zwischen -10 und +60 "C mit einem hochtourigen Rührwerk ausgerührt, wobei auf 1 g Surfactant 1 bis 20 ml und vorzugsweise 3 ml Alkohol eingesetzt werden. Als Lösungsmittel sind Methanol oder Ethanol verwendbar. Die alkoholische Phase wird durch Filtration oder Zentrifugieren abgetrennt, worauf das Lösungsmittel abgedampft wird. Die so erhaltene trockene Substanz weist folgende Zusammensetzung auf: (%) Phospholipide 45 - 65; Neutrallipide 10 - 25; Cholesterol 10 - 25; Proteine 0,5 - 1,5; freie Fettsäuren 2 - 5 sie ist bei intratrachealer Applikation ausnahmslos gut verträglich. Die Phospholipide liegen dabei in folgenden Mengenverhältnissen vor: (%) Phosphatidylcholin 50 - 60 Phosphatidylglycerol 2 - 3 Phosphatidylethanolamin 10 - 20 Phosphatidylserin 1 - 2 Sph ingomyel in 10 - 25 Phosphatidylinosit 0,5 - 1. Es wurde weiterhin gefunden, dass die alkoholische Extraktion der Surfactant-Substanz günstig mehrfach vorgenommen werden kann. Hierzu wird der in Alkohol unlösliche Rückstand erneut unter den für die Extraktion angeführten Bedingungen mit Ethanol oder Methanol ausgerührt. Mit dem nun zurückbleibenden unlöslichen Material kann eine dritte Ausrührung analog zur ersten und zweiten durchgeführt werden. Das erhaltene Material hat im wesentlichen die Zusammensetzung des ersten Extrakts, jedoch nimmt der Phospholipidgehalt nach der 3. Extraktion drastisch ab, während der Cholesterolgehalt in der Folge der Extraktionsschritte ständig ansteigt. Mit der 2. und 3. Extraktion lässt sich jedoch noch gut wirksames und bei intratrachealer Instillation ausnahmslos verträgliches Material herstellen. Es wurde ferner gefunden, dass durch Bindung des aus Lunge extrahierten Surfactans an ein unlösliches Adsorbens, insbesondere Kieselgel oder aktivierte Silicate, und anschliessende Elution mit für Phospholipide geeigneten Lösungsmitteln auf einfache Weise ein Surfactantpräparant gewonnen werden kann, das eine hohe pharmakologische Wirksamkeit bei der Behandlung des Atemnotsyndroms aufweist. Bei der Durchführung dieses erfindungsgemässen Verfahrens erfolgt die Extraktion des Surfactants aus zerkleinerter Säugerlunge, vorzugsweise Rinderoder Schweinelunge, durch Lösungen von Mono- oder Disacchariden, vorzugsweise durch isotonische Glucose- oder Saccharoselösung, oder, wie literaturbekannt, mit Elektrolytlösungen, z.B. isotonischer Natriumchloridlösung. Nach Abtrennung von Zellfragmenten durch Zentrifugieren bei niedrigen relativen Zentrifugalbeschleunigungen in bekannter Weise wird das Wirkstoffgemisch an Kieselgel oder aktiviertem Magnesiumsilicat adsorbiert. Die reversible Bindung von wirksamem Surfactant an Kieselgel war nicht zu erwarten, da in der Literatur ausdrücklich darauf hingewiesen wird > dass die physikalischen und chemischen Eigenschaften dieses Vielkomponentengemisches eine irreversible Bindung an feste Chromatographiematerialien bewirken und somit eine Isolierung von biologisch aktivem Surfactant auf diese Weise nicht durchführbar ist (King, R. J., Federation Proceedings 33 (1974) 2238-2247). Nach Auswaschen von nicht adsorbiertem Material mit destilliertem Wasser oder Aceton wird der aktive Wirkstoff mit einem Lösungsmittel bzw Lösungsmittelgemisch, vorzugsweise nach Folch mit Chloroform/Methanol, vom Adsorbens desorbiert und durch Eindampfen im Vakuum oder Trocknung durch Einleiten von Stickstoff gewonnen. Hierbei wird ein dem natürlichen entsprechendes Surfactant mit einem Phospholipidgehalt zwischen 30 und 70 Oc und vorzugsweise 40 bis 50 Co erhalten. Das Präparat zeichnet sich durch einen niedrigen Proteingehalt ( L 0,5 t) aus. Der niedrige Proteingehalt ist im Hinblick auf mögliche Nebenwirkungen von Surfactant-Präparaten bedeutsam, da durch den Extraktionsvorgang sowohl Serumproteine als auch organspezifische Proteine in den Extrakt gelangen, die bei Verabreichung an Menschen antigen wirken können (Bergmann, K.-Ch., Lachmann, B., Z. Erkr.Atm. 137 (1972) 55-60; Morley, C.N., et al., The Lancet 1 (1981) 64-68). Zur Analyse wurden folgende analytischen Methoden angewandt: Der Phospholipidgehalt wurde nach einem von Bartlett (N. Zöllner und D. Eberhagen, "Untersuchung und Bestimmung der Lipide im Blut", Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New York, 1965) angegebenen Verfahren (s = + 2 X) bestimmt. Als Vergleichssubstanz diente Kaliumdihydrogenphosphat. Der Gehalt an Cholesterol wurde mit einem kolorimetrischen Verfahren bestimmt, bei den neben dem Cholesterol auch der Cholesterolester erfasst wird (s = t 4 g). Die Neutrallipide liessen sich mit dem Triglycerid Bestimmungsverfahren nach DAB 8 bzw dem 2. Arzneibuch der DDR, Methode 1 A.1.1., erfassen. Der Proteingehalt wurde nach einem von Hesse und Lindner (Zeitschrift für Allg. Mikrobiologie 11 (1971) 585-594; loc. cit. 15 (1975) 559-561) beschriebenen Verfahren bestimmt, das sich besonders gut zur Ermittlung von Proteinkonzentrationen in wässrigen Emulsionen eignet (s = + 3 t0). Die Be- Bestimmung der einzelnen Phospholipide wurde nach dünnschichtchromatographischer Trennung nach P. Genter et al. (J. of Chromatography 206 (1981) 200 - 204) kolorimetrisch (siehe N. Zöllner und D. Eberhagen, "Untersuchung und Bestimmung der Lipide im Blut"; Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New York, 1965) durchgeführt (s = + 3 s für die Hauptkomponenten). Als Vergleichssubstanz diente Kaliumhydrogenphosphat. Der Elutionsverlust der Phospholipide liegt innerhalb der Streuung. Die Ermittlung des Gehalts an freien Fettsäuren erfolgt nach dünnschichtchromatographischer Trennung und Elution im Gaschromatographen ts = + 10 t). Durch das erfindungsgemässe Präparat wird die Oberflächenspannung einer wässrigen Phase verändert. Die Messung der Oberflächenspannung und die Aufnahme der Hysteresekurven erfolgten mit einer Wilhelmy-Waage Typ ATF 01 (Hersteller Fa. E. Biegler, 301 Mauerbach, Usterreich) nach bekanntem Verfahren. Eine weitere Verbesserung der Stabilität und Emulgierbarkeit der Präparationen ist durch Zusatz einer Phospholipidfraktion erzielbar, die wie folgt gewonnen wird: Nach Lösen des getrockneten erfindungsgemässen Lungen-Surfactant-Präparats der oben angeführten Zusammensetzung in einem Lipidlösungsmittel, vorzugsweise Chloroform, in einer Konzentration von 0,1 bis 1,0 g/ml Lipidlösungsmittel wird eine Acetonfällung der Phospholipidfraktion bei -20 bis +20 "C und vorzugsweise bei +5 "C vorgenommen. Das Volumverhältnis von Wirkstofflösung zu Aceton liegt zwischen 1:1 und 1:8 und beträgt vorzugsweise 1:4. Nach Abtrennung der Mutterlauge durch Filtration oder Zentrifugieren und Waschen der festen Phase mit Aceton, das vorzugsweise auf -10 OC bis -20 C temperiert ist, wird die Phospholipidfraktion getrocknet. Die so erhaltene nahezu weisse Substanz, die zu 70 bis 90 t aus Phospholipiden besteht und keine biologische Aktivität zeigt, kann dem durch Alkoholextraktion gewonnenen Surfactant zugesetzt werden. Das so erhaltene getrocknete Gemisch besitzt folgende Zusammensetzung (bestimmt nach den oben angegebenen Verfahren): (t) Phospholipide 60 - 75 Neutrallipide 5 - 15 Cholesterol 10 - 20 Protein 0,5 - 1,5 freie Fettsäuren 2 - 5. Die Phospholipide liegen dabei in folgenden Mengenverhältnissen vor: (ovo) Phospholipidcholin 60 - 70 Phosphatidylglycerol 2 - 4 Phosphatidylethanolamin 5 - 10 Phosphatidylserin 1 - 3 Sphingomyelin 10 - 20 Phosphatidylinosit 2 - 3. Nach diesem Verfahren gewonnene Präparate zeigten bei In-vivo-Tests im Tierversuch eine hohe Wirksamkeit und waren bei intratrachealer Instillation ausnahmslos gut verträglich, wie aus den Ergebnissen des experimentellen Teils hervorgeht. Auch die durch wiederholte Alkoholextraktion und Acetonfällung gewonnene Phospholipidfraktion kann in analoger Weise verwendet werden. Herstellung eines pharmazeutischen Mittels Aus dem erhaltenen, dem natürlichen entsprechenden Surfactant mit einem Phospholipidgehalt zwischen 40 und 70 t wurde nach folgendem Verfahren ein pharmazeutisches Mittel hergestellt: Die Substanz wird nach Lösen in Ethanol oder halogenierten Kohlenwasserstoffen über Glasfilter und Filterpapier vorgeklärt und anschliessend über lösungsmittelbeständige Membranen sterilfiltriert. Nach Abdampfen des Lösungsmittels im Vakuum wird der erhaltene Rückstand mit Wasser zur Injektion oder sterilen wässrigen Lösungen emulgiert, in Glasgefässe abgefüllt, tiefgefroren und lyophilisiert. Als wässrige Lösungen können dabei isotonische Natriumchlorid- oder Calciumchloridlösungen bzw isotonische Lösungen von Mono- und Disacchariden eingesetzt werden. Zum Homogenisieren eignet sich vorteilhaft ein Ultra-Turrax-Rührgerät. Ausserdem ist ein Zusatz von geeigneten Mitteln zur Verbesserung der Emulgierfähigkeit und zur Erhöhung der Stabilität sowie von Puffern zur Einstellung bestimmter pH-Bereiche möglich. Eine andere Möglichkeit zur Herstellung pharmazeutischer Mittel besteht darin, das erhaltene Surfactant unter Umgehung der Sterilfiltration in organischen Lösungsmitteln gleich in Wasser oder den oben genannten wässrigen Lösungen zu emulgieren, wobei die oben aufgeführten Zusätze hier ebenfalls verwendbar sind, und die Emulsion zu autoklavieren. Nach Abkühlung kann erforderlichenfalls nochmals emulgiert werden. Anschliessend wird die Emulsion in Glasgefässe abgefüllt, tiefgefroren und lyophilisiert. Die folgenden Ausführungsbeispiele erläutern die Erfindung. Beispiel 1 4,1 kg frische Rinderlunge wurden von Fettgewebe, grösseren Tracheateilen sowie anhaftendem Blut befreit und zerteilt. Anschliessend wurden die Lungenstücke in einem Fleischwolf mit 4-mm-Loch scheibe zerkleinert. Der so erhaltene Brei aus Lungengewebe (3,5 kg) wurde mit 14,0 1 isotonischer Natriumchloridlösung durch einstündiges intensives Rühren bei 20 OC extrahiert. Nach Absaugen über Dederongaze konnten 12,4 1 eines treiben Extrakts gewonnen werden, der 1 h lang bei 20 C mit 7,6 1 Chloroform ausgerührt wurde. Nach 3 Tagen Stehenlassen wurde der ent standene feine Proteinniederschlag während 15 min bei einer relativen Zentrifugalbeschleunigung (RZB-Wert) von 2000 abzentrifugiert. Man erhielt 5,81 1 einer klaren Chloroformphase, die nach Aufkonzentrieren im Rotationsverdampfer unter Stickstoff zur Trockne eingeengt wurde. Es wurden 6,14 g Substanz erhalten Beispiel 2 200 kg Lungengewebe wurden von Fettgewebe und grossen Tracheateilen befreit und in einem Fleischwolf mit 8-mm-Lochscheibe zerkleinert. Der Brei aus Lungengewebe wurde mit 600 l -isotonischer Natriumchloridlösung in einem Industrieextraktor 30 min bei 17 "C gerührt. Nach 15 min Standzeit sammelte sich der überwiegende Teil des Lungengewebes über der wässrigen Phase. Diese konnte vom Boden des Extraktors abgezogen und über einen Separator von noch enthaltenen Lungenteilen und Blutzellen befreit werden. Die erhaltenen 410 1 wässriger Extrakt wurden in 200-1 Kippkesseln weiterverarbeitet. In zwei Arbeitsgängen wurden je 130 1 Extrakt mit jeweils 1,1 kg wasserfreiem Calciumchlorid versetzt und mit je 32,0 1 Chloroform (DAB 8) 25 min bei 15 C gerührt; ferner wurden 150 1 Extrakt mit 1 > 2 kg wasserfreiem Calciumchlorid und 36,0 1 Chloroform (DAB 8) versetzt und 25 min gerührt. Nach Stehenlassen über Nacht wurde jeweils die wässrige Oberphase und damit ein Teil der gefällten Proteine abdekantiert und der Rest über eine Schälzentrifuge abgetrennt. Es wurden etwa 60 1 Chloroformphase erhalten, die im Vakuumumlaufverdampfer und anschliessend im Rotationsumlaufverdampfer eingeengt wurden. Die Lösungsmittelreste wurden mit Stickstoff ausgetrieben. Es wurden 513 g Substanz erhalten. Beispiel 3 2,0 kg wie in Beispiel 1 aus 2,2 kg Rinderlunge gewonnener Brei aus Lungengewebe wurden in 5,0 1 Chloroform 60 min bei 20 OC gerührt. Nach dem Abfiltrieren des Lungengewebes wurde der Chloroformextrakt nach Aufkonzentrierung im Rotationsverdampfer unter Stickstoff zur Trockne eingeengt. Es wurden 2,84 g Substanz erhalten. Beispiel 4 276 kg frische Rinderlunge wurden von Fettgewebe und grösseren Tracheate-ilen befreit und in einem Industriefleischwolf mit 8-mm-Lochscheibe zerkleinert. Die so erhaltenen 250 kg Brei aus Lungengewebe wurden mit 300 1 Chloroform bei 22 "C in einem Industrieextraktor 60 min ausgerührt. Die Chloroformphase wurde nach 50 min Stehenlassen abgelassen, im Vakuumumlaufverdampfer und im Vakuumrotationsverdampfer aufkonzentriert und durch Stickstoffeinleitung zur Trockne eingeengt. Es wurden 950 g Substanz erhalten. Beispiel 5 7,2 kg frische Rinderlunge wurden von Fettgewebe und grösseren Tracheateilen befreit und nach Abwaschen von anhaftendem Blut in einem Fleischwolf zerkleinert. Die erhaltenen 6,0 kg Brei aus Lungengewebe wurden portionsweise mit isotonischer Natriumchloridlösung 30 min ausgerührt, wobei auf 2,5 kg Lungengewebe 8,0 1 wässrige Lösung eingesetzt wurden. Nach Abtrennung der Rückstände des Lungengewebes über Dederongaze wurden 8,8 1 der erhaltenen 17,6 1 Extrakt mit 59,0 g wasser- freiem Calciumchlorid versetzt und mit 2,2 1 Tetrachlorkohlenstoff 30 min ausgerührt, wobei 1,97 1 organische Phase erhalten wurden. Nach Abdampfen des Lösungsmittels wurden 2,34 g Substanz erhalten. Beispiel 6 Frische Rinderlunge wurde von Fettgewebe, grösseren Tracheateilen sowie anhaftendem Blut befreit und dabei zerteilt. Anschliessend wurden die Lungenstücke in einem Fleischwolf mit 4-mm Lochscheibe zerkleinert. Die so erhaltenen 65,0 kg Brei aus Lungengewebe wurden in 5 Portionen von je 13,0 kg mit je 15,6 1 Chloroform 30 min bei Raumtemperatur ausgerührt. Nach dem Abfiltrieren des Lungengewebes wurden zwischen 10,5 und 11,5 1 Chloroformextrakt erhalten. Die 5 Extrakte wurden vereinigt, im Rotationsverdampfer aufkonzentriert und unter Stickstoff zur Trockne eingeengt. Es wurden 254 g rohes Surfactant erhalten. 55 g davon wurden mit 105 ml Ethanol (96 C) bei Raumtemperatur mittels einem Rührwerk (Ultra-Turrax) 5 min ausgerührt. Die Temperatur stieg dabei auf 62 C an. Der unlösliche Rückstand wurde abfiltriert und der klare Ethanolextrakt im Rotationsverdampfer aufkonzentriert; danach wurde das Lösungsmittel unter Stickstoff völlig ausgetrieben. Es wurden 11,9 g reines Surfactant erhalten. Beispiel 7 Aus 12,0 kg Brei aus Lungengewebe der nach Beispiel 1 hergestellt wurde, konnten nach 30 min Ausrühren mit 15,0 1 Chloroform bei Raumtemperatur 10,2 1 Extrakt gewonnen werden. Nach Abdampfen des Lösungsmittels wurden 50,24 g rohes Surfactant erhalten. 20 g dieses rohen Surfactants wurden mit 80 ml Ethanol 5 min bei -10 "C ausgerührt. Nach Aufarbeitung wie in Beispiel 6 wurden 3,89 g reines Surfactant erhalten. Beispiel 8 Aus 16,0 kg Brei aus Lungengewebe, der nach Beispiel 6 hergestellt wurde, konnten nach 30 min Ausrühren mit 18,2 1 Chloroform bei Raumtemperatur 14 1 Extrakt gewonnen werden. Nach Abdampfen des Lösungsmittels blieben 63,1 g rohes Surfactant zurück. 26 g dieses rohen Surfactants wurden mit 80 ml Ethanol 5 min bei 15 bis 20 "C ausgerührt. Nach Aufarbeitung wie in Beispiel 6 wurden 8,45 g reines Surfactant erhalten. Beispiel 9 Aus 125,0 kgBrei aus Lungengewebe, der nach. Beispiel 6 hergestellt wurde, konnten nach portionsweisem Ausrühren mit insgesamt 150 1 Chloroform bei Raumtemperatur während jeweils 30 min 102,6 1 Extrakt gewonnen werden. Nach Abdampfen des Lösungsmittels wurden 520 g rohes Surfactant erhalten. 500 g dieses rohen Surfactants wurden mit 1500 ml Ethanol 15 min bei 10 bis 2Q c > C ausgerührt. Der erhaltene Extrakt wurde wie in Beispiel 6 aufgearbeitet. Es wurden 198 g reines Surfactant erhalten. Beispiel 10 Aus 150 g reinem Surfactant von Beispiel 9 wurde nach Auflösen in 320 ml Chloroform und Abkühlen auf 0 C durch Zusatz von 960 ml tiefgekühltem Aceton (-20 C) eine Phospholipidfraktion ausgefällt. Die Fällung wurde nach 3 h Stehenlassen abfiltriert, ausgefällt und getrocknet. Es wurden 97,0 g Phospholipidfraktion erhalten. Beispiel 11 39,4 g rohes Surfactant von Beispiel 8 wurden mit 117,6 ml Methanol 15 min bei 28 bis 34 OC ausgerührt. Nach Aufarbeitung gemäss Beispiel 6 wurden 13,83 g reines Surfactant erhalten. Beispiel 12 Aus 196,0 kg Brei aus Lungengewebe wurden nach dem Verfahren von Beispiel 6 723 g rohes Surfactant gewonnen. 603 g rohes Surfactant wurden mit 1809 ml Ethanol 15 min bei 15 bis 20 OC ausgerührt. Aus dem ethanolischen Extrakt wurden nach Abdampfen des Lösungsmittels 240 g reines Surfactant erhalten. Dabei blieben 365 g in Ethanol unlöslicher Rückstand zurück. Beispiel 13 Die 365 g Rückstand von Beispiel 12 wurden erneut mit 1200 ml Ethanol unter den gleichen Be- dingungen ausgerührt. Aus dem Extrakt wurden nochmals 59 g reines Surfactant erhalten. Dabei blieben 314 g in Ethanol unlöslicher Rückstand zurück. Beispiel 14 40 g reines Surfactant von Beispiel 13 wurden in Chloroform zu insgesamt 100 ml gelöst. Nach Abkühlen dieser Lösung auf 8 "C wurde die Phospholipidfraktion durch Zusatz von 300 ml tiefgekühltem Aceton ausgefällt. Der Niederschlag wurde abgesaugt und getrocknet. Es wurden 16,9 g Phospholipidfraktion erhalten. Beispiel 15 4,5 kg frische Rinderlunge wurden von anhaftendem Fettgewebe, grösseren Blutgefässen und Tracheateilen befreit und zerteilt. Nach Waschen der Lungenstücke, wobei diese vor allem von anhaftendem Blut befreit wurden, erfolgte die Zerkleinerung des Lungengewebes in einem Fleischwolf mit 4-mm Lochscheibe. Der so erhaltene Brei aus Lungengewebe wurde in Portionen zu 500 g mit je 2,0 1 Saccharoselösung (114 g/l) 10 min lang intensiv geschüttelt. Durch Filtrieren über ein Kunststoffsieb und anschliessendes Zentrifugieren des Filtrats bei einem RZB-Wert von 500 und 20 C wurden 15,4 1 wässriger Extrakt erhalten. 7,0 1 dieses Extrakts wurden mit 420 g Xiesel- gel für die Säulenchromatographie 60 min bei 20 C gerührt. Nach 16 h Stehenlassen bei 4 C wurde der klare Oberstand abgehebert und verworfen. Das Kieselgel mit adsorbiertem Surfactant wurde nach Absaugen des restlichen Oberstands mit 1 1 destilliertem Wasser auf einer G 2-Friete gewaschen. Die Elution des Surfactants erfolgte mit 1,5 1 Chloroform-Methanol-Gemisch (2:1). Die Chloroformphase wurde abgetrennt und unter Stickstoff zur Trockne eingeengt. Im Ergebnis wurden 515 mg Substanz erhalten. Beispiel 16 8,4 1 des in Beispiel 15 beschriebenen wässrigen Extrakts wurden mit 500 g Florisil 30 min bei 20 OC gerührt. Nach 16-h-Stehenlassen bei 4 "C wurde der klare Oberstand abgehebert und verworfen. Die weitere Aufarbeitung erfolgte wie in Beispiel 15. Es wurden 600 mg Substanz erhalten. Beispiel 17 2,5 kg Brei aus Lungengewebe, der wie in Beispiel 15 hergestellt war, wurde lyophilisiert und nach 3-wöchiger Kühllagerung, wie ebenfalls in Beispiel 15 beschrieben, zu einem wässrigen Extrakt aufgearbeitet. Dabei wurde das Lungenlyophilisat entsprechend seinem ursprünglichen Frischgewicht eingesetzt. Als Extraktionsmittel diente in Abweichungen von Beispiel 15 Glucoselösung (55 g/l). 7,1 1 des wässrigen Extrakts wurden mit 420 g Kieselgel für die Säulenchromatographie 60 min bei 20 OC gerührt. Nach Aufarbeitung des Adsorbats nach der in Beispiel 15 erläuterten Variante wurden 310 mg Substanz erhalten. Beispiel 18 36,0 kg frische Rinderlunge wurden wie in Beispiel 1 zu einem Brei aus Lungengewebe verarbeitet. Je 500 g dieses Breis wurden jeweils mit 2,0 1 isotonischer Natriumchloridlösung 60 min bei 20 OC intensiv gerührt. Nach Filtrieren über Dederongaze und anschliessendes Zentrifugieren des Filtrats bei einem R7B-htert von 500 und 20 C konnten 120 1 wässriger Extrakt gewonnen werden. Jeweils 30 1 Extrakt wurden mit 2,5 kg Florisil 60 min bei 20 OC gerührt. Nach dem Absetzen des Adsorptionsmittels wurde der Überstand (jeweils 26 bis 28 1) abdekantiert und erneut mit 2,0 kg Florisil 60 min bei 20 OC gerührt. Die einzelnen Florisiladsorbate wurden dann mit je 5 1 destilliertem Wasser gewaschen und mit je 6,4 1 Chloroform-Methanol-Gemisch (2:1) eluiert Die Chloroformphasen wurden vereinigt. Nach Einengen unter Stickstoff wurden 12,2 g Substanz erhalten. Beispiel 19 Aus 9,35 kg frischer Rinderlunge wurden nach Beispiel 15 in 500-g-Portionen, die mit je 2,0 1 isotonischer Natriumchloridlösung bei 20 OC intensiv gerührt wurden, 31,7 1 wässriger Extrakt gewonnen. 23,0 1 dieses Extrakts wurden mit 1,5 kg Florisil 60 min bei 20 "C gerührt. Nach Abtrennen des Überstands wurde das Surfactant-beladene Florisil in zwei gleiche Teile geteilt. Der eine Teile wurde mit 4 1 Leitungswasser, der andere mit 3 1 Aceton gewaschen. Jeder Teil wurde anschliessend mit 2 1 Chloroform-Methanol-Gemisch (2:1) eluiert; die Chloroformphasen wurden abgetrennt und unter Stickstoff zur Trockne eingedampft. Das mit Wasser gewaschene Adsorbat lieferte 1,0 g, das mit Aceton gewaschene Adsorbat 0,62 g Substanz. Beispiel 20 8,0 1 des nach Beispiel 19 gewonnenen Extrakts wurden mit 1,2 kg Kieselgel 60 min bei 20 "C gerührt. Nach Abtrennen des überstands wurde das Surfactant-beladene Kieselgel mit 4 1 Leitungswasser gewaschen und mit 2 1 Dichlormethan Methanol-Gemisch (2:1) eluiert. Die zur Trockne eingedampfte Dichlormethanphase ergab 422 mg Substanz. Beispiel 21 Aus 9,0 1 wässrigem Extrakt, der wie in Beispiel 19 hergestellt war, konnten nach Ausrühren mit 2 kg Kieselgur, Waschen des Adsorbats mit 10 1 Leitungswasser und Elution des Surfactant Materials durch 60 min Rühren in 2,8 1 Chloroform-Methanol-Gemisch (2:1) 600 ml Chloroform phase erhalten werden. Diese wurde unter Stickstoff zur Trockne eingedampft und ergab 1,3 g Substanz. Beispiel 22 Aus 3,0 1 wässrigem Extrakt, der wie in Beispiel 19 hergestellt worden war, konnten nach Ausrühren mit 0,68 kg Kieselgel, das bereits in Beispiel 19 verwendet worden war und durch Behandlung mit 2 N NaOH regeneriert werden konnte, Waschen des Adsorbats mit 2 1 Aceton und Elution des Surfactant-Materials durch 60 min Rühren in 1000 ml Chloroform-Methanol-Gemisch 960 ml Chloroformphase erhalten werden. Diese wurde unter Vakuum zur Trockne eingedampfz und ergab 0,6 g Substanz. Beispiel 23 9,0 kg Brei aus Lungengewebe, der wie in Beispiel 1 hergestellt worden war, wurden in 18 Portionen zu 0,5 kg mit je 2,0 1 isotonischer Kochsalzlösung durch 10 min kräftiges Schütteln extrahiert, worauf die Rückstände des Lungengewebes über ein Kunststoffsieb und Dederongaze abgetrennt wurden. Die erhaltenen 34 1 Extrakt wurden auf eine mit 2,0 kg Florisil gefüllte Säule (Durchmesser 15 cm, Füllhöhe 25 cm) aufgegeben Anschliessend wurde mit 10,0 1 destilliertem Wasser gewaschen und der Wirkstoff mit 7,5 1 Chloroform Methanol-Gemisch (2:1) eluiert. Nach Stehenlassen über Nacht konnte die Methanolphase des Eluats abgesaugt werden. Die Chloroformphase wurde im Vakuum zur Trockne eingeengt. Es wurden 2,65 g Surfactant erhalten. Beispiel 24 20 g erfindungsgemässer Wirkstoff (Phospholipidgehalt 60,1 %) wurden in 200 ml unvergälltem Ethanol gelöst, über eine G 4-Fritte (aufgelegtes Glasfaserfilterpapier NK VIII) vorfiltriert und anschliessend sterilfiltriert (über Sartoriusfilter SM 116-07).=Nach Aufkonzentrieren der sterilen Lösung im Vakuumrotationsverdampfer wurden durch Einleitung von sterilem Stickstoff bei gleichzeitiger Evakuierung des Gefässes die Lösungsmittelreste abgedampft. Die so erhaltene sterile Substanz wurde mit 180 ml sterilem Wasser mit einem Rührwerk (Ultra-Turrax) emulgiert. Die Emulsion wurde so in 25-ml-Rollrandflaschen abgefüllt, dass 17 Flaschen mit je 400 mg Phospholipid erhalten wurden. Nach Einfrieren bei -50 "C für 3 Tage wurden die Proben lyophilisiert, wobei die Gegenheizung auf maximal 20 "C eingestellt wurde. Nach der Gefriertrocknung wurden die Flaschen mit Durchstechstopfen (B 180) und Aluminiumkapselverschlüssen (Alu-Capsolutverschlüssen) verschlossen. Beispiel 25 12 g reines Surfactant von Beispiel 9 und 12 g der Phospholipidfraktion von Beispiel 10 wurden gemeinsam emulgiert und wie in Beispiel 24 zu einem pharmazeutischen Mittel verarbeitet. Beispiel 26 5,0 g erfindungsgemässer Wirkstoff (Phospholipidgehalt 56,8 t) wurden in 50,0 ml Chloroform (DAB 8) gelöst, über Glasfaserfilterpapier (Schichtdicke 1,80 mm) und Filtrierpapier vorfiltriert sowie anschliessend über Glasfaservorfilter (Schichtdicke 450 pm) auf Cellulose-Sterilfiltern (0,2 pm Porendurchmesser, 90 pm Schichtdicke) sterilfiltriert. Nach Aufkonzentrieren der sterilen Lösung im Vakuumrotationsverdampfer wurden durch Einleiten von sterilem Stickstoff bei gleichzeitiger Evakuierung des Gefässes die Lösungsmittelreste abgedampft. Die so erhaltene sterile Substanz wurde mit 40,0 ml sterilem Wasser mit einem Rührwerk (Ultra-Turrax) emulgiert. Die erhaltene Emulsion wurde so in 25-ml-Rollrandflaschen abgefüllt, dass 7 Flaschen mit je 400 mg Phopholipid erhalten wurden. Nach Einfrieren bei -50 OC für 3 Tage wurden die Proben lyophilisiert, wobei die Gegenheizung auf maximal 20 "C eingestellt wurde. Nach der Gefriertrocknung wurden die Flaschen mit Durchstechstopfen S 180 und Aluminiumkapselverschlüssen (Alu-Capsolutverschlüssen) verschlossen. Die Eigenschaften der in den Beispielen 1 - 18 hergestellten Präparate sind in Tabelle 1 zusammengefasst. Tabelle 1 Chemische Zusammensetzung (%) Gesamt- Pro- Neutral- Chol- freie Was PL PC PE PG Sph PS PI tein lipide esterol Fett- ser säuren Beispiel 1 57,5 nicht bestimmt 0,32 nicht bestimmt Beispiel 2 30,0 16,4 5,2 0,5 3,5 0,2 0,5 0,83 61,3 9,8 3,6 1,3 Beispiel 3 40,0 nicht bestimmt 1,5 nicht bestimmt Beispiel 4 26,4 13,3 3,5 0,3 3,6 0,3 0,4 1,2 54,2 13,5 2,1 2,4 Beispiel 5 53,2 nicht bestimmt 0,4 nicht bestimmt Beispiel 6 62,4 41,2 8,1 0,7 7,5 0,2 0,8 0,6 17,3 14,2 2,4 Beispiel 7 55,6 34,6 7,9 1,5 6,1 1,2 0,5 0,8 13,3 14,6 2,4 Beispiel 8 58,5 39,4 9,5 1,0 5,7 0,2 0,6 n.b. 10,8 15,1 2,3 Beispiel 9 59,8 38,3 7,5 0,0 8,9 0,8 0,5 1,5 15,9 16,0 3,3 Beispiel 10*) 74,7 48,4 9,7 0,0 12,5 0,7 0,5 1,5 2,2 9,1 2,5 Beispiel 10 64,4 40,5 8,7 0,0 9,9 0,4 0,3 1,3 8,1 12,4 2,8 Beispiel 11 67,0 34,0 3,6 0,9 11,3 3,8 1,3 n.b. 4,2 15,5 4,6 Beispiel 12 60,2 37,5 8,9 1,1 7,3 1,7 0,5 0,9 12,5 16,7 2,7 Beispiel 13 53,4 30,1 11,3 1,0 7,5 0,6 0,4 n.b. 17,0 23,8 n.b.**) Beispiel 14*) 77,6 43,7 15,5 1,3 12,9 1,5 0,5 1,2 3,3 10,4 n.b. Beispiel 15 23,0 nicht bestimmt 0,3 28,2 41,2 n.b. Beispiel 16 40,0 nicht bestimmt 0,6 23,4 30,1 n.b. Beispiel 17 21,5 nicht bestimmt 0,4 31,3 38,3 n.b. Beispiel 18 25,0 nicht bestimmt 0,2 19,5 39,4 n.b. Die grenzflächenaktive Wirksamkeit der Präparationen der Beispiele 2, 3, 9, 10 und 18 wurde anhand der Oberflächenspannung einer wässrigen Phase nach dem oben angegebenen Verfahren bestimmt. Substanzeinsatz: 5 pl mit 60mg Phospholipid/ml. Die erhaltenen Ergebnisse der Oberflächenspannungsmessungen sind in den Fig. 1 bis 5 dargestellt: Fig. 1: Substanz vom Beispiel 2 Fig. 2: Substanz vom Beispiel 3 Fig. 3: Substanz vom Beispiel 9 Fig. 4: Substanz vom Beispiel 10 Fig. 5: Substanz vom Beispiel 18. Als Abszisse ist dabei die relative Oberfläche angetragen. Gesamt- Pro- Neutral- Chol- freis Was PL PC PE PG Sph PS PI tein lipide esterol Fett- ser säuren Beispiel 19 Variante mit Wasser 34,2 nicht bestimmt 0,3 16,2 40,2 nicht bestimmt Variante mit Aceton 40,1 nicht bestimmt 0,1 12,3 37,3 nicht bestimmt Beispiel 20 21,2 nicht bestimmt 0,3 28,7 39,3 nicht bestimmt Beispiel 21 40,0 nicht bestimmt 0,4 17,4 31,6 nicht bestimmt Beispiel 22 50,0 nicht bestimmt 0,4 11,8 29,4 nicht bestimmt Beispiel 23 38,2 nicht bestimmt 0,5 18,3 33,7 nicht bestimmt *) Phospholipidfraktion **) nicht bestimmt Abkürzungen : PL Phospholipid PC Phosphatidylcholin PE Phosphatidylethanolamin PG Phosphatidylglycerol Sph Sphingomyelin PS Phosphatidylserin PI Phosphatidylinosit Biologische Wirksamkeit und Verträglichkeit: 1. Einfluss von Surfactants auf unreife Lungen Zur Untersuchung des Einflusses des Surfactants auf unreife Lungen wurden unreife Kaninchenneugeborene durch Hysterotomie am 27. Schwangerschaftstag geboren (Gesamtschwangerschaftsdauer 31 + 1 Tag). Die Tiere wurden unmittelbar nach der Geburt tracheotomiert; ein Teil erhielt über eine Trachealkanüle durchschnittlich 60 pl Surfactant in die Trachea instilliert; unbehandelte Schwestertiere des gleichen Wurfes dienten als Kontrollen. Anschliessend wurden die Tiere in einen druckkonstanten Ganzkörperplethysmographen (38 OC) gebracht und mit reinem Sauerstoff bei kontinuierlicher Registrierung von Beatmungsdruck und Atemvolumen beatmet. Aus den Primärdaten wurde die Thorax-Lungen-Compliance errechnet. Bei einigen Versuchen wurden alle Tiere nach der Geburt 10 bis 15 min beatmet, und erst dann erhielt ein Teil der Tiere Surfactant über die Trachea instilliert. Die erhaltenen Ergebnisse sind in Tabelle 2 aufgeführt und in den Fig. 6 bis 8 dargestellt. Nach dem erfindungsgemässen Verfahren gewonnene Präparate zeigten bei In-vivo-Tests im Tierversuch eine hohe Wirksamkeit und waren bei intratrachealer Instillation ausnahmslos gut verträglich. Dabei wurde wie folgt verfahren: 2. Einfluss von Surfactants beim Erwachsenen-Atemnot syndrom Der Einfluss einer Surfactant-Instillation beim Erwachsenen-Atemnotsyndrom wurde an Meerschweinchen untersucht. Vor Erzeugung der akuten respiratorischen Insuffizienz wurden die Tiere nach allgemeiner Anaestesie tracheotomiert; zur Blutentnahme wurde ein Katheter in die A. carotis eingeführt. Die Tiere wurden druckkonstant mit reinem Sauerstoff beatmet. Das akute Atemnotsyndrom wurde bei den Tieren durch 8-malige bronchiale Auswaschung des Surfactansmit warmer physiologischer Kochsalzlösung erreicht. Die Spülvolumina entsprachen der Vitalkapazität der Tiere. Am Ende der Spülprozedur lag der arterielle Sauerstoffdruck bei diesen Tieren, trotz Beatmung mit Spitzenüberdrucken von 3C mbar (30 cm H20), PEEF-Positive-Endexpiratory-Pressure)- Werten von 8 mbar (8 cm H20) und reinem Sauerstoff, unter 80 mbar (60 mm Hg). 10 und 40 min nach der letzten Lungenspülung erhielt die Hälfte der Tiere je 1 ml Surfactant tracheal instilliert. Die Blutgasanalysen erfolgten 5, 15 und 30 min nach der jeweiligen Surfactant-Verabreichung. Ein optimales Surfactant führt unter absolut gleichen Beatmungsbedingungen zu einer unmittelbaren Erhöhung des arteriellen Sauerstoffdrucks um durchschnittlich 266 mbar (200 mm Hg). Die erhaltenen Ergebnisse sind in Tabelle 2 aufgeführt und in Fig. 9 dargestellt. 3. Prüfung auf Verträglichkeit nach trachealer Instillation an juvenilen Ratten Die Prüfung auf Verträglichkeit von juvenilen Ratten erfolgte im Konzentrationsbereich der therapeutischen Dosis (200 mg Phospholipid/kg Körpergewicht) bis zur dreifachen therapeutischen Dosis. Pro Ratte (ca. 50 g Körpergewicht) werden 10 bis 30 mg Phospholipid eingesetzt. Bei den Verträglichkeitstests wurden weibliche und männliche Tiere herangezogen, wobei bei einem Versuch (n = 10) nur Ratten gleichen Geschlechts ausgewählt wurden. Methodik: 10 ca. 50 g schwere Ratten (männlich bzw weiblich) wurden mit Ether narkotisiert; anschliessend erfolgten Halsschnitt sowie stumpfe Präparation der Trachea. Nach der Präparation wurde die Ethernarkose vertieft, und zwar so, dass die Tiere weiterhin gleichmässig durchatmeten. Mit einer gebogenen 20iger-Kanüle wurden jeweils 10 bis 30 mg Phospholipid in 0,3 ml physiologischer Kochsalzlösung injiziert. Nach erfolgter Injektion wurde der Schnitt vernäht. Der Beobachtungszeitraum betrug zwei Wochen, wobei nach 72 h der Endbefund festgestellt wurde. Pro Testserie (50 bis 60 Tiere) wurden fünf Kontrolltiere mitgeführt, denen jeweils 0,3 ml physiologische Kochsalzlösung injiziert wurden. Die erhaltenen Ergebnisse sind in Tabelle 2 aufgeführt. Tabelle 2 Biologische Wirksamkeit und Verträglichkeit EMI36.1 <SEP> Arterieller <SEP> Sauerstoffpartialdruck <tb> <SEP> beim <SEP> experimentellen <SEP> Atemnotsyndrom <tb> <SEP> durch <SEP> Lungenspülung <SEP> vor <SEP> und <SEP> nach <tb> <SEP> Verträg- <SEP> Compliance/kg <SEP> (ml <SEP> /mbar) <SEP> Surfactant-Instillation <SEP> (mbar) <tb> <SEP> lichkeit <SEP> bei <SEP> einem <SEP> Beatmungsdruck <tb> <SEP> von <SEP> +25 <SEP> mbar, <SEP> 30 <SEP> min <SEP> vor <SEP> Instilla- <SEP> 30 <SEP> min <SEP> nach <SEP> n <tb> <SEP> nach <SEP> Geburt <SEP> n <SEP> tion <SEP> Instillation <tb> Beispiel <SEP> 1 <SEP> n.b. <SEP> 1,18 <SEP> # <SEP> 0,24 <SEP> 4 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Beispiel <SEP> 2 <SEP> n.b. <SEP> 1,01 <SEP> # <SEP> 0,32 <SEP> 5 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Beispiel <SEP> 3 <SEP> n.b. <SEP> 1,36 <SEP> # <SEP> 0,21 <SEP> 5 <SEP> 68 <SEP> # <SEP> 11 <SEP> 298 <SEP> # <SEP> 53 <SEP> 3 <tb> Beispiel <SEP> 4 <SEP> n.b. <SEP> 1,12 <SEP> # <SEP> 0,24 <SEP> 8 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Beispiel <SEP> 5 <SEP> n.b. <SEP> 1,75 <SEP> # <SEP> 0,31 <SEP> 4 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Beispiel <SEP> 6 <SEP> 1,0 <SEP> 1,4 <SEP> # <SEP> 0,3 <SEP> 5 <SEP> 71 <SEP> # <SEP> 5 <SEP> 486 <SEP> # <SEP> 59 <SEP> 5 <tb> Beispiel <SEP> 7 <SEP> 0,9 <SEP> 1,6 <SEP> # <SEP> 0,4 <SEP> 7 <SEP> 81 <SEP> # <SEP> 11 <SEP> 408 <SEP> # <SEP> 37 <SEP> 5 <tb> Beispiel <SEP> 8 <SEP> 1,0 <SEP> 1,6 <SEP> # <SEP> 0,3 <SEP> 6 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Beispiel <SEP> 9 <SEP> 1,0 <SEP> 1,1 <SEP> # <SEP> 0,4 <SEP> 4 <SEP> 64 <SEP> # <SEP> 7 <SEP> 338 <SEP> # <SEP> 97 <SEP> 6 <tb> Beispiel <SEP> 10*) <SEP> 1,0 <SEP> 0,2 <SEP> # <SEP> 0,1 <SEP> 5 <SEP> 72 <SEP> # <SEP> 11 <SEP> 166 <SEP> # <SEP> 51 <SEP> 4 <tb> Beispiel <SEP> 10 <SEP> 1,0 <SEP> 1,4 <SEP> # <SEP> 0,3 <SEP> 7 <SEP> 69 <SEP> # <SEP> 5 <SEP> 377 <SEP> # <SEP> 68 <SEP> 4 <tb> Beispiel <SEP> 11 <SEP> 0,9 <SEP> 1,3 <SEP> # <SEP> 0,2 <SEP> 6 <SEP> 75 <SEP> # <SEP> 13 <SEP> 414 <SEP> # <SEP> 81 <SEP> 5 <tb> Beispiel <SEP> 12 <SEP> 1,0 <SEP> 1,8 <SEP> # <SEP> 0,4 <SEP> 6 <SEP> 61 <SEP> # <SEP> 8 <SEP> 324 <SEP> # <SEP> 60 <SEP> 5 <tb> Beispiel <SEP> 13 <SEP> 1,0 <SEP> 1,6 <SEP> # <SEP> 0,4 <SEP> 7 <SEP> 95 <SEP> # <SEP> 20 <SEP> 301 <SEP> # <SEP> 51 <SEP> 4 <tb> Beispiel <SEP> 14*) <SEP> 1,0 <SEP> 0,3 <SEP> # <SEP> 0,1 <SEP> 4 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Beispiel <SEP> 15 <SEP> n.b. <SEP> 1,01 <SEP> # <SEP> 0,73 <SEP> 4 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> EMI37.1 <SEP> Arterieller <SEP> Sauerstoffpartialdruck <tb> <SEP> beim <SEP> experimentellen <SEP> Atemnotsyndrom <tb> <SEP> durch <SEP> Lungenspülung <SEP> vor <SEP> und <SEP> nach <tb> <SEP> Verträg- <SEP> Compliance/kg <SEP> (ml/mbar) <SEP> Surfactant-Instillation <SEP> (mbar) <tb> <SEP> lichkeit <SEP> bei <SEP> einem <SEP> Beatmungsdruck <tb> <SEP> von <SEP> +25 <SEP> mbar, <SEP> 30 <SEP> min <SEP> vor <SEP> Instilla- <SEP> 30 <SEP> min <SEP> nach <SEP> n <tb> <SEP> nach <SEP> Geburt <SEP> n <SEP> tion <SEP> Instillation <tb> Beispiel <SEP> 16 <SEP> n.b. <SEP> 1,60 <SEP> # <SEP> 0,51 <SEP> 7 <SEP> 73 <SEP> # <SEP> 4 <SEP> 373 <SEP> # <SEP> 44 <SEP> 5 <tb> Beispiel <SEP> 17 <SEP> n.b. <SEP> 1,20 <SEP> # <SEP> 0,24 <SEP> 3 <SEP> 56 <SEP> # <SEP> 15 <SEP> 317 <SEP> # <SEP> 128 <SEP> 4 <tb> Beispiel <SEP> 18 <SEP> n.b. <SEP> 1,53 <SEP> # <SEP> 0,02 <SEP> 2 <SEP> 68 <SEP> # <SEP> 8 <SEP> 362 <SEP> # <SEP> 69 <SEP> 4 <tb> Beispiel <SEP> 19 <tb> <SEP> Variante <SEP> mit <tb> <SEP> Wasser <SEP> n.b. <SEP> 1,27 <SEP> # <SEP> 0,33 <SEP> 6 <SEP> 61 <SEP> # <SEP> 3 <SEP> 300 <SEP> # <SEP> 108 <SEP> 6 <tb> <SEP> Variante <SEP> mit <tb> <SEP> Aceton <SEP> n.b. <SEP> 1,14 <SEP> # <SEP> 0,23 <SEP> 4 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Beispiel <SEP> 20 <SEP> n.b. <SEP> 1,01 <SEP> # <SEP> 0,02 <SEP> 5 <SEP> 51 <SEP> # <SEP> 19 <SEP> 290 <SEP> # <SEP> 47 <SEP> 3 <tb> Beispiel <SEP> 21 <SEP> n.b. <SEP> 1,19 <SEP> # <SEP> 0,41 <SEP> 8 <SEP> 65 <SEP> # <SEP> 11 <SEP> 378 <SEP> # <SEP> 33 <SEP> 5 <tb> Beispiel <SEP> 22 <SEP> n.b. <SEP> nicht <SEP> bestimmt <SEP> 80 <SEP> # <SEP> 23 <SEP> 336 <SEP> # <SEP> 83 <SEP> 4 <tb> Beispiel <SEP> 23 <SEP> n.b. <SEP> 1,25 <SEP> # <SEP> 0,46 <SEP> 4 <SEP> nicht <SEP> bestimmt <tb> Koutrolltiere <tb> Beispiel <SEP> 1-5 <SEP> n.b. <SEP> 0,095 <SEP> # <SEP> 0,061 <SEP> 124 <SEP> 75 <SEP> # <SEP> 24 <SEP> 117 <SEP> # <SEP> 79 <SEP> 36 <tb> Beispiel <SEP> 6-14 <SEP> 1,0 <SEP> 0,07 <SEP> # <SEP> 0,04 <SEP> 62 <SEP> 65 <SEP> # <SEP> 7 <SEP> 131 <SEP> # <SEP> 99 <SEP> 28 <tb> Beispiel <SEP> 15-23 <SEP> n.b. <SEP> 0,08 <SEP> # <SEP> 0,06 <SEP> 98 <SEP> 81 <SEP> # <SEP> 20 <SEP> 120 <SEP> # <SEP> 68 <SEP> 23 <tb> *) Phospholipidfraktion Auswertung der Verträglichkeit: Die Verträglichkeit ist der Quotient aus Anzahl der überlebenden Tiere pro Gesamttierzahl (n = 10); der Wert 1,0 bedeutet entsprechend ein Überleben aller 10 Tiere. Die Substanz wird als verträglich bezeichnet, wenn mindestens 9 Tiere überleben.

Claims: Ansprüche 1. Lungen-Surfactant, erhältlich durch (A) (A1) Extraktion von zerkleinertem Lungengewebe oder eines wässrigen, mit einer isotonischen Lösung eines Elektrolyts oder eines Mono oder Disaccharids hergestellten Lungenextrakts mit einem nicht mit Wasser mischbaren Lipid lösungsmittel, (A2) Abtrennung ungelöster Bestandteile aus dem Extrakt, (A3) Abtrennung des Lipidlösungsmittels, (A4) Extraktion mit einem wasserlöslichen Alkohol, (A5) Abtrennung alkoholunlöslicher Bestandteile aus dem Extrakt und (A6) Abtrennung des Alkohols und Gewinnung des Wirkstoffs oder (B) (B1) Abzentrifugieren der Zellfragmente aus einem wässrigen, mit einer isotonischen Lösung eines Elektrolyts oder eines Mono- oder Disaccharids hergestellten Lungenextrakts bei niederen relativen Zentrifugalbeschleu nigungen, (B2) Inkontaktbringen des Extrakts mit einem un löslichen Adsorbens, (B3) Waschen des beladenen Adsorbens mit Wasser oder Aceton unter Entfernung von nicht adsorbiertem Material, (B4) Desorption des Wirkstoffs mit einem organischen Lösungsmittel oder einem Lösungsmittelgemisch und (B5) Abtrennung des bzw der Lösungsmittel unter Ge winnung des Wirkstoffs. 2. Lungen-Surfactant nach Anspruch 1, gekennzeichnet durch 40 - 70 % Phospholipide, ( 1,5 t und vorzugsweise 0,5 - 1,0 g Proteine, 10 - 40 t Cholesterin und 5 - 30 Ob Neutrallipide. 3. Lungen-Surfactant nach Anspruch 1 oder 2, erhältlich durch Aus rühren von zerkleinertem Lungengewebe mit der 2- bis 10-fachen Gewichtsmenge isotonischer Kochsalzlösung oder Lösungen von Mono- oder Disacchariden in Verfahren (A),Schritt (A1). 4. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 3, erhältlich durch Extraktion von zerkleinertem Lungen gewebe mit 0,5 bis 10 1 Lipidlösungsmittel/kg Lungengewebe bzw mit dem 0,1- bis 2-fachen Volumen an Lipidlö sungsmittel in Verfahren (A),Schritt (A1). 5. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 4, erhältlich durch Extraktion von zerkleinertem Lungen gewebe mit 1,5 1 Lipidlösungsmittel/kg Lungengewebe. 6. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 5, erhältlich unter Verwendung von halogenierten Kohlen wasserstoffen als Lipidlösungsmittel in Verfahren (A),Schritt (A1). 7. Lungen-Surfactant nach Anspruch 6, erhältlich unter Verwendung von Dichlormethan, Trichlormethan und/oder Tetrachlormethan als Lipidlösungsmittel in Verfahren (A),Schritt (A1). 8. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 5, erhältlich unter Verwendung von Petrolether als Lipidlösungsmittel in Verfahren (A),Schritt (A1). 9. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 8, erhältlich unter Verwendung von Methanol und/oder Ethanol als wasserlöslichen Alkohol und Anwendung einer Extraktionstemperatur von -20 bis +60 "C in Verfahren (A),Schritt (A4). 10. Lungen-Surfactant nach Anspruch 9, erhältlich unter Anwendung einer Extraktionstemperatur von 10 bis 30 OC in Verfahren (A),Schritt (A4). 11. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 10, erhältlich unter Wiederholung von Schritt (A4),Ver fahren (A). 12. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 11, erhältlich unter Einsatz des Alkohols in einer Menge von 1 bis 30 ml/g roher Wirkstoff in Verfahren (A), Schritt (A4). 13. Lungen-Surfactant nach Anspruch 12, erhältlich unter Einsatz des Alkohols in einer Menge von 2 bis 20 ml/g roher Wirkstoff in Verfahren (A), Schritt (A4). 14. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 13, ferner gekennzeichnet durch Gehalt einer Phospho lipidfraktion im Verhältnis 10:1 bis 1:2 und vorzugs weise 1:1, die erhalten ist durch Lösen von 0,05 bis 2 g des nach Verfahren (A), Schritte (A1) bis (A6j erhaltenen Wirkstoffs pro ml eines Lipidlösungsmittels und anschliessende Fällung mit Aceton im Verhältnis 1:0,5 bis 1:10 und vorzugsweise 1:3 bis 1:5. 15. Lungen-Surfactant nach Anspruch 14, dadurch gekennzeich net, dass die Phospholipidfraktion durch Fällung bei -20 bis +40 OC erhalten ist. 16. Lungen-Surfactant nach Anspruch 14 oder 15, dadurch ge kennzeichnet, dass die Phospholipidfraktion durch Fäl lung bei 2 bis 10 "C erhalten ist. 17. Lungen-Surfactant nach Anspruch 1 oder 2, erhältlich unter Verwendung eines Adsorbens auf Kieselsäure basis in Verfahren (B), Schritt (B2). 18. Lungen-Surfactant nach Anspruch 17, erhältlich unter Verwendung von aktiviertem Kieselgel oder Magnesium silicat als Adsorbens in Verfahren (B), Schritt (B2). 19. Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1, 2, 17 oder 18, erhältlich unter Verwendung eines Lösungs mittelgemischs aus Methylenchlorid oder Chloroform und Methanol im Verhältnis 2:1 in Verfahren (B), Schritt (B4). 20. Phospholipidfraktion des Lungen-Surfactants nach einem der Ansprüche 1 bis 13, 17, 18 oder 19, erhältlich durch Lösen von 0,05 bis 2 g des nach Verfahren (A), Schritte (A1) bis (A6) erhaltenen Wirkstoffs pro ml eines Lipidlösungsmittels und anschliessende Fällung mit Aceton im Verhältnis 1:0,5 bis 7:10 und vorzugsweise 1:3 bis 1:5. 21. Phospholipidfraktion nach Anspruch 20, erhältlich durch Fällung bei -20 bis +40 "C, 22. Phospholipidfraktion nach Anspruch 20 oder 21, erhältlich durch Fällung bei 2 bis 10 oC. 23. Verfahren zur Herstellung des Lungen-Surfactants nach einem der Ansprüche 1 bis 19, gekennzeichnet durch (A) (Al) Extraktion von zerkleinertem Lungengewebe oder eines wässrigen, mit einer isotonischen Lösung eines Elektrolyts oder eines Mono oder Disaccharids hergestellten Lungen extrakts mit einem nicht mit Wasser misch baren Lipidlösungsmittel, (A2) Abtrennung ungelöster Bestandteile aus dem Extrakt, (A3) Abtrennung des Lipidlösungsmittels, (A4) Extraktion mit einem wasserlöslichen Alkohol, (As) Abtrennung alkoholunlöslicher Bestandteile aus dem Extrakt und (A6) Abtrennung des Alkohols und Gewinnung des Wirkstoffs oder (B) (B1) Abzentrifugieren der Zellfragmente aus einem wässrigen, mit einer isotonischen Lösung eines Elektrolyts oder eines Mono- oder Disaccharids hergestellten Lungenextrakts bei niederen relativen Zentrifugalbeschleu- nigungen, (B2) Inkontaktbringen des Extrakts mit einem un löslichen Adsorbens, (B3) Waschen des beladenen Adsorbens mit Wasser oder Aceton unter Entfernung von nicht adsorblertem Material, (B4) Desorption des Wirkstoffs mit einem organischen Lösungsmittel oder einem Lösungsmittelgemisch und (B5) Abtrennung des bzw der Lösungsmittel unter Ge winnung des Wirkstoffs. 24. Verfahren nach Anspruch 23, gekennzeichnet durch Aus rühren von zerkleinertem Lungengewebe mit der 2- bis 10-fachen Gewichtsmenge isotonischer Kochsalzlösung oder Lösungen von Mono- oder Disacchariden in Ver fahren (A), Schritt (A1). 25. Verfahren nach Anspruch 23 oder 24, gekennzeichnet durch Extraktion von zerkleinertem Lungengewebe mit 0,5 bis 10 1 Lipidldsungsmittel/kg Lungengewebe bzw mit dem 0,1- bis 2-fachen Volumen Lipidlösungs mittel in Verfahren (A), Schritt (Al). 26. Verfahren nach Anspruch 25, gekennzeichnet durch Extraktion von zerkleinertem Lungengewebe mit 1,5 1 Lipidldsungsmittel/kg Lungengewebe in Verfahren (A) Schritt (Al). 27. Verfahren nach einem der Ansprüche 23 bis 26, ge kennzeichnet durch Verwendung von halogenierten Kohlenwasserstoffen als Lipidlösungsmittel in Verfahren (A), Schritt (A1). 28. Verfahren nach Anspruch 27, gekennzeichnet durch Verwendung von Dichlormethan, Trichlormethan und/oder Tetrachlormethan als Lipidlösungsmittel in Ver fahren (A), Schritt (A1). 29. Verfahren nach einem der Ansprüche 23 bis 26, ge kennzeichnet durch Verwendung von Petrolether als Lipidlösungsmittel in Verfahren (A), Schritt (A1). 30. Verfahren nach einem der Ansprüche 23 bis 29, ge kennzeichnet durch Verwendung von Methanol und/oder Ethanol als wasserlöslichen Alkohol und Anwendung einer Extraktionstemperatur von -20 bis +60 "C in Verfahren (A), Schritt (A4). 31. Verfahren nach Anspruch 30, gekennzeichnet durch Ver wendung von Methanol und/oder Ethanol als wasser löslichen Alkohol und Anwendung einer Extraktions temperatur von 10 bis 30 OC in Verfahren (A), Schritt (A4). 32. Verfahren nach einem der Ansprüche 23 bis 31, gekenn zeichnet durch Wiederholung des Schritts (A4) in Verfahren (A). 33. Verfahren nach einem der Ansprüche 23 bis 32, gekenh- zeichnet durch Einsatz des Alkohols in einer Menge von 1 bis 30 ml/g roher Wirkstoff in Verfahren (A), Schritt (A4). 34. Verfahren nach Anspruch 33, gekennzeichnet durch Ein satz des Alkohols in einer Menge von 2 bis 20 ml/g roher Wirkstoff in Verfahren (A), Schritt (A4). 35. Verfahren zur Herstellung des Lungen-Surfactants nach Anspruch 14, gekennzeichnet durch Zugabe einer Phospholipidfraktion im Verhältnis 10:1 bis 1:2 und vorzugsweise 1:1 zum nach Verfahren (A), Schritte (A1) bis (A6) erhaltenen Wirkstoff, wobei die Phospholipidfraktion hergestellt wird durch Lösen von 0,05 bis 2 g des nach Verfahren (A), Schritte (A1) bis (A6) erhaltenen Wirkstoffs pro ml eines Lipidlösungsmittels und an schliessende Fällung mit Aceton im Verhältnis 1:0,5 bis 1:10 und vorzugsweise 1:3 bis 1:5. 36. Verfahren nach Anspruch 35, gekennzeichnet durch Zugabe einer Phospholipidfraktion, die durch Fällung bei -20 bis +40 "C erhalten ist. 37. Verfahren nach Anspruch 35, gekennzeichnet durch Zugabe einer Phospholipiafraktion, die durch Fällung bei 2 bis 10 OC erhalten ist. 38. Verfahren zur Herstellung des Lungen-Surfactants nach einem der Ansprüche 1 bis 19, gekennzeichnet durch Verwendung eines Adsorbens auf Kieselsäure basis in Verfahren (B), Schritt (B2). 39. Verfahren nach Anspruch 38, gekennzeichnet durch Ver wendung von aktiviertem Kieselgel oder Magnesium silicat als Adsorbens in Verfahren (B), Schritt (B2j. 40. Verfahren nach einem der Ansprüche 23, 24, 38 oder 39, gekennzeichnet durch Verwendung eines Lösungs mittelgemischs aus Methylenchlorid oder Chloroform und Methanol im Verhältnis 2:1 in Verfahren (B), Schritt (B4), 41. Verfahren zur Herstellung der Phospholipidfraktion nach einem der Ansprüche 20 bis 22, gekennzeichnet durch Lösen von 0,05 bis 2 g des nach Verfahren (A), Schritte (A1) bis (A6) erhaltenen Wirkstoffs pro ml eines Lipidlösungsmittels und anschliessende Fällung mit Aceton im Verhältnis 1:0,5 bis 1:10 und vorzugsweise 1:3 bis 1:5. 42. Verfahren nach Anspruch 41, gekennzeichnet durch Fällung bei -20 bis +40 OC. 43. Verfahren nach Anspruch 41 oder 42, gekennzeichnet durch Fällung bei 2 bis 10 C. 44. Pharmazeutische Mittel, insbesondere zur Behandlung des durch Surfactantmangel bedingten Atemnot syndroms, gekennzeichnet durch das Lungen-Surfactant nach einem der Ansprüche 1 bis 19 und/oder die Phospholipidfraktion nach einem der Ansprüche 20 bis 22 als Wirkstoff neben üblichen Hilfs und/oder Trägerstoffen. 45. Pharmazeutische Mittel nach Anspruch 44, gekennzeich- net durch eine zur Applikation über die Atemwege ge eignete galenische Form. 46. Pharmazeutische Mittel nach Anspruch 44 oder 45 ge kennzeichnet durch eine physiologische Tragerflussigkeit und einen Gehalt an Wirkstoff bzw Wirkstoffgemisch von 1 bis 500 mg/ml Trägerflüssigkeit. 47. Verfahren zur Herstellung der pharmazeutischen Mittel nach einem der Ansprüche 44 bis 46, gekennzeichnet durch Lösen des Wirkstoffs bzw Wirkstoffgemischs in einem Lösungsmittel, gegebenenfalls Abtrennung unlöslicher Bestandteile, Sterilfiltration, Einengen im Vakuum zur Trockne, Emulgieren in destilliertem Wasser und Lyophilisierung. Verfahren nach Anspruch 47, gekennzeichnet durch Verwendung von Ethanol oder Chloroform als Lösungsmittel.

Inventors: BOYDE, PETER, DR.RER.NAT., DAUTH, CHRISTOPH, DR.RER.NAT., DRAHEIM, REGINA, DIPL.-BIOCHEM., ILLHARDT, ROLF, DR.RER.NAT., LACHMANN, BURKHARDT DR.SC.MED.DR.MED.SCI., POTTER, HEINRICH, DR.RER.NAT., RATTKE, WILFRIED, DR.RER.NAT., Pötter, Heinrich, Dr.rer.nat.
Applicants: VEB ARZNEIMITTELWERK DRESDEN
Application year: 1984
Main classification: A61K35
IPC codes: A61K35, A61K31