RESPIRATION OR RESPIRATION AND ELECTROCARDIOGRAPHIC MONITOR

Abstract: Monitor (10) includes a patient unit (14) having an input circuit (22) applying a carrier signal from generator (18) through isolator (20) and signal receiving circuitry for demodulating the respiration signal (26-38) and for demodulating the electrocardiographic signal (70-75) and an analysis unit (16) including circuitry for the respiration signal (40-54, 58-64) and for the electrocardiographic signal (76-101) under control of a microprocessor (56). The respiration circuitry (26-38, 40-54, 58-64) may be employed by itself or with the electrocardiographic circuitry (70-101).

Description: Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffs gegen parasitare Krankheitserreger Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffes gegen Parasiten, insbesondere gegen Malariaparasiten. Es ist bekannt, Impfstoffe durch Infektion eines Orga- nismus mit Parasiten als Antigen und Gewinnung von Antiseru aus de infizierten Organismus zu gewinnen. Ebenso ist es bekannt, veranderte Parasiten, welche we- sentlich herabgesetzte Virulenz aufweisen, als Aktiv- impfstoff direkt einzusetzen. In beiden Fallen wird im infizierten Organismus die Bildung von Antikδrpern in- duziert, die im einen Falle im Form von Antiserum zur Passivimpfung verwendet werden, im anderen Falle den .Organismus gegen die Infektion durch virulente Parasi¬ ten schutzen. Bei vielen Parasiten, insbesondere aber bei Malariapa¬ rasiten und phylogenetisch damit verwandten Parasiten erwies sich dieses bekannte Verfahren als unwirksam bzw. ungenugend wirksam. *In diesen Fallen ist daher die chemotherapeutische Behandlung trotz der damit verbun- denen bekannten Nachteile immer noch das Mittel der Wahl bei der Prophylaxe oder Behandlung der Parasiten- infektion. Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, diesen Nach- teil zu beseitigen und ein Verfahren zu schaffen, wel¬ ches die Gewinnung eines Impfstoffes sowohl fur die Aktivimpfung als auch fur die Passivimpfung gegen Para- siteninfektionen ermδglicht, bei denen bisher Impfstof- fe nicht erhalten werden konnten. Eine weitere Aufgabe OMP der Erfindung liegt in der Herstellung von wirksameren Impfstoffen gegen Parasiten, bei denen es schon bisher mδglich war, Impfstoffe zu erhalten. Gelδst wird diese Aufgabe erfindungsgemaβ durch ein Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffes gegen Para¬ siten, insbesondere Malariaparasiten, durch Infektion eines Organismus mit den Parasiten als Antigen und Ge¬ winnung von Antiserum aus de infizierten Organismus, welches dadurch gekennzeichnet ist, daβ man mit dem Parasiten infizierte Erythrocyten in vivo oder in vitro unter Hypoferramiebedingungen wachsen laBt, die Parasi¬ ten aus den Erythrocyten isoliert und die isolierten Parasiten oder Zellwandfragmente derselben als Antigen verwendet. Die erfindungsgemaβ als Antigen verwendeten Parasiten oder deren Zellwandfragmente weisen eine we- sentlich gesteigerte Antigenitat auf. Die Erfindung geht von der Annahme aus, daβ das Eisen- transportsystem der Parasiten, insbesondere der Malaria- parasiten aber auch der phylogenetiεch mit diesen verwandten Parasiten, vo Eisentransportsystem der armblϋtlerzelle verschi«den ist und daher Bedingungen erzeugt werden kδnnen, die zur Bildung von Antikδrpern fϋhren, welche anscheinend die fur den Eisen ransport erforderlichen Regionen in der Parasitenmembran voll- standig blockieren, ohne das Eisentransportsystem der Zellen des Wirtsorganismus wesentlich zu stδren. Es wird angenom en, daβ hierdurch die Zellwand des Parasi- ten so verandert wird, daβ sie die beobachtete gestei- gerte Antigenitat auf eist. Unter Hypoferramiebedingungen (Eisenmangelbedingungen) werden im Rahmen der vorliegenden Erfindung Bedingungen verstanden, welche den Erythrocyten bzw. ihrem Wirtsor¬ ganismus weniger Eisenionen zur Verfϋgung stellen, als dem Mindestbedarf fur eine normale Entwicklung entspricht. Werden die Erythrocyten in vivo gehalten, wird mit anderen Worten ein Wirtstier mit den Parasiten infi- ziert, so lassen sich Hypoferramiebedingungen erzielen, indem man das Wirtstier mit einer Eisenmangeldiat oder einer eisenfreien Diat versorgt. Alternativ ist es mδg- lich, der Diat einen Eisenchelatbildner zuzusetzen, der das in der Diat und im Wirtsorganismus vorhandene Eisen teilweise oder vollstandig bindet. Um die Belastung des Wirtsorganismus hierbei mδglichst gering zu halten, werden biologische Eisenchelatbildner bevorzugt, da diese im allgemeinen von der Zelle leicht abgebaut werden kδnnen, insbesondere wenn es sich um Proteine handelt. Besonders bevorzugt wird als biologischer Eisenchelatbildner Desferrioxamin, im Handel erhaltlich unter der Bezeichnung Desferal. Beispiele fur andere biologische Eisenchelatbildner, die im Rahmen der Erfindung verwendet werden kδnnen, sind Endotoxin, Ferritin und Lactoferrin sowie Ge ische derselben. Ebenfalls verwendbar, aber.nicht bevorzugt, sind chemische Eisenchelatbildner, wie Ethylendiamintetra- essigsaure und die im chemischen Aufbau ahnlichen Substanzen. Diese werden * jedoch vom Organismus schwie- riger abgebaut und sind weniger spezifisch f r Eisen. Auch Resochin erwies sich als Eisenchelatbildner und kann in unter der kurativen Dosis liegenden Menge ein- gesetzt werden. Falls die Zuchtung der infizierten Erythrocyten in vitro erfolgt, setzt man der Nahrlδsung entεprechend geringe Eisenmengen oder ein oder mehrere Eisenchelat¬ bildner zu. OMPI Gleichgϋltig ob die infizierten Erythrocyten in vivo oder in vitro wachsen gelassen werden, in jedem Fall wendet man bevorzugt eine ombination von Eisenmangel- diat und Eisenchelatbildnerzusatz an. Die Isolierung der Parasiten aus den Erythrocyten kann nach bekannten Methoden erfolgen. Im Falle von Malaria- parasiten eignet sich insbesondere die in Z. Parasitenkd. 58, 151-159 (1979) beschriebene Methode. Sie beruht auf einer Aggregation der Erythrocyten, z. B. mit Concana- valin A, vorsichtige mechanische Lyse der aggregierten Erythrocyten, z. B. durch Passieren eines entsprechend engmaschigen Netzes, und Auftrennung und Separierung der Parasiten durch tragerfreie Elektrophorese in einer geeigneten Pufferlδsung. Anstelle von Concanavalin A kδnnen auch andere Aggregationsmittel verwendet werden, wie z. B. Antiseren, Phyt-Ha -agglutϋmin (PHA) und der- gleichen. Gemaβ einer anderen bekannten Methode werden die Erythrocyten nach quasi Vernetzung mit Hilfe von Lecti- nen und Lyse durch schwache Scherkrafte in eine Percoll-Gradienten durch*Zentrifugieren bei niedrigen g-Werten isoliert (10. Internationaler ongress fur tropische Medizin und Malaria, Manila, 9. bis 15.11.1980) Die so erhaltenen isolierten Parasiten unterscheiden sich von den unter Normalbedingungen gewachsenen Parasiten durch eine wesentlich verstarkte antigene Wirksamkeit. Diese verstarkte antigene Wirksamkeit kommt nicht nur dem vollstandigen Parasiten sondern auch dessen durch mechanische oder chemische Lyse ge- bildeten Zellwandfragmenten zu. Falls ein Antiserum als Passivimpfstoff hergestellt werden soil, verwendet man bevorzugt den isolierten vollstandigen Parasiten al-s OMP Antigen. Im Falle einer Aktivimpfung werden bevorzugt Zellwandfragmente verabreicht. Es kδnnen jedoch auch fur die Antiserumgewinnung Zellwandfragmente verwendet werden und andererseits auch die vollstandigen isolier¬ ten Parasiten als Aktivimpfstoff eingesetzt werden. Die I pfung erfolgt in beiden Fallen unter den dem Fachmann gelaufigen Bedingungen. Die Mitverwendung von Adjuvanz ist nicht erforderlich. Gemaβ einer bevorzug- ten Ausfϋhrung der Erfindung wird der hypoferramische Parasit bzw. dessen Zellwandfragment jedoch zusammen mit hypoferramischem Serum verabreicht. Unter hypoferra¬ mischem Serum wird das Serum von Versuchstieren ver- standen, welche unter hypoferramischen Bedingungen, wie oben naher erlautert, gehalten wurden. Hierbei kann es sich sowohl um das Serum von infizierten Wirtstieren handeln, die fur die Bildung von hypoferramischen Para¬ siten verwendet wurden, als auch um nichtinfizierte aber unter Hypoferramiebedingungen gehaltene Tiere. Hierdurch lafit sich eine weitere Steigerung der antige- nen Wirksamkeit erzielen, die insbesondere bei der Ver- wendung von Zellwandfragmenten ausgepragt ist. Λ Bei dieser bevorzugten Ausfϋhrungsform der Erfindung unter Verwendung eines hypoferramischen Serums wird zweckmaβig dem Serum nach der Entnahme aus dem Wirts¬ tier ein Proteinaseinhibitor, wie z. B. Trasylol, zuge- setzt. Erfolgt die Zuchtung des hypoferramischen Parasiten in Erythrocyten, die in vivo gehalten werden, so halt man vorzugsweiεe das Wirtstier vor der Infektion eine ge- wisse Zeit unter Hypoferramiebedingungen. Hierbei wird der Eisenspeicher im Wirtstierorganismus geleert und verhindert, daβ nach der Infektion der Parasit noch f r einige Zeit mit ausreichend Eisen versorgt wird oder, um dies zu verhuten, so groBe Mengen an Eisenchelatbild¬ ner zugesetzt werden, daβ auch auf den Wirtsorganismus selbst der Eisenmangel nachteilig wirkt. Die Zϋchtung der hypoferramischen Parasiten erfolgt vorzugsweise ϋber eine Mehrzahl von Passagen. Dabei hat es sich als zweckmaβig erwiesen, nach jeweils etwa 2 bis 8 Passagen durch das Wirtstier bzw. die Erythrocyten- kultur den Zusatz an Eisenchelatbildner zur Diat- bzw. der Nahrflϋssigkeit zu erhδhen. Gute Ergebnisse werden in der Regel schon mit 4 bis 10 Passagen erzielt, jedoch kδnnen auch mehr Passagen angewendet werden. Im Falle der Verwendung von Malariaparasiten reicht im allgemeineri ein Wachsturrt von 2 bis 6, vorzugsweise 3 bis 4 Tagen je Passage aus. Gemaβ einer besonders be- vorzugten Ausfϋhrungsform der Erfindung werden daher Versuchstiere 2 Tage z. B. mit Desferrioxamin vorbehan- delt und dann mit den Parasiten infiziert. Nach 3 oder 4 Tagen wird infiziertes Blut entno mεn und dann in gleicher Weise f r die j*weils nachste Passage wieder verwendet. Die zur Erzeugung der fur Hypoferramiebedingungen erforderliche Menge an Chelatbildner laBt sich jeweils experimentell bestimmen. Im Falle des Desferrioxamins erwies sich ein Bereich von 20 bis 100 mg pro kg pro Tag bei subcutaner Verabreichung als gut geeignet. Bei einer weiteren Dosiserhδhung konnte eine Steigerung der Wirksamkeit nicht festgestellt werden. Das Verfahren der Erfindung ist, wie erwahnt, auch mit Eisenmangeldiat alleine durchfuhrbar. In diesem Falle wird zweckmaβig wahrend des letzten Teils der Zϋchtung die Eisenzugabe vδllig eingestellt. Hierdurch wird jedoch die erforderliche Wachstumsdauer fur die Erzielung der speziellen antigenen Eigenschaften verlangert im Vergleich zu einem wachsen lassen unter Zusatz eines Eisenchelatbildners. Gemaβ einer speziellen Ausgestaltung des erfindungsge- maβen Verfahrens kδnnen Wir stiere, die fiir eine Passage des Parasiten verwendet wurden, auch zur Gewin¬ nung von Antiserum herangezogen werden. In diesem Falle wird die Verabreichung von Eisenchelatbildner langere Zeit fortgesetzt, zweckmaβig wenigstens 10 Tage, vor¬ zugsweise wenigstens .14 Tage nach der Infektion. Auf diese Weise behandelte Versuchstiere erweisen sich als gegenϋber einer Neuinfektion durch den Parasiten immun und weisen bereits einen Antikδrpertiter auf, der ihr Serum als Impfs off verwendbar macht. Erfindungsgemaβ hergestellter Aktivimpfstoff weist eine so hohe antigene Wirksamkeit auf, daβ er nicht nur zur Prophylaxe, sondern auch zur Therapie verwendet werden kann. Beispielsweise ist es mδglich, einem malariakran- ken Patienten infizierte Erythrocyten zu entnehmen, diese unter Eisenmangelbedingungen in vitro zu ziichten, schlieβlich die Erythrocyten zu lysieren und das erhal- tene Lysat, welches die unter Hypoferramiebedingungen gewachsenen Parasiten enthalt, als Aktivimpfstoff dem gleichen Patienten wieder zu verabreichen. O PI Falls kein Aktivimpfstoff sondern ein Passivserum ge- wϋnscht wird, kann der mit dem erfindungsgemaβ erhalt- lichen Antigen hergestellte Antikδrper auch als raono- klonaler Antikδrpεr unter Anwendung der dem Fachmann hierfϋr bekannten Methoden gezύchtet und als solcher appliziert werden. Die Erfindung wurde vorstehend unter Bezugnahme auf den Malariaparasiten beschrieben. Sie eignet sich jedoch in gleicher Weise auch zur Herstellung von Impfstoffen gegen andere parasitare Krankheitserreger aus der Gruppe der Protozoen. Ein Beispiel fur derartige andere Parasiten sind Trypanosomen. Die folgenden Beispiele erlautern die Erfindung weiter. B e i s p i e l 1 I. Herstellung antigenen Zellmaterials von P. vinckei NMRJ-Mause, 25 g, werden zur Entleerung ihres Fe- Speichers 3 Tage mit einem biologischen Komplex- bildner (10 g Desferrioxamin subcutan taglich) vorbehandelt und mit P. vinckei infiziert und mit 10 mg Desferrioxamin subcutan taglich weiterbehan- delt. Am fϋnften Tage nach der Infektion werden die Tiere getδtet (Parasitamie ca. 10 bis 30 %) und das malariainfizierte Blut zur Infektion von drei Tage mit Desferrioxamin vorbehandelten Ver- suchstieren der zweiten Passage verwendet. Ab der zweiten Tierpassage werden die Versuchstie- re mit einer hδheren Doεis von Desferrioxamin (10 mg morgens; 5 mg mittags) versorgt und in der Nacht unter Eisenmangeldiat gehalten. Im ganzen werden 10 Tierpassagen durchlaufen. Der Serumeisengehalt der Versuchstiere in Passage eins ist auf ca. 50 % der Normalwerte (ca. 60 mg% entsprechend ungefahr 20 bis 25 % Fe-gesattigtem Transferin und 75 bis 80 % Fe-freiem Transferin) und in den folgenden Passagen auf ca. 30 mg Serum- eisen entsprechend 15 bis 10 % Fe-Transferin und 85 bis 90 % Fe-freiem Transferin (freie Eisenbin- dungskapazitat) erniedrigt unter den angegebenen Bedingungen. Parasitenisolierung und Membrangewinnung Nach der zehnten Tierpassage werden die Versuchs¬ tiere getδtet, das infizierte Blut entnommen, mit Heparin und Trasylol versetzt, Serum und Zellen getrennt und die parasitierten Erythrocyten von den nicht infizierten Zellen mittels Percollgra- dienten (vgl. Abstracts 10. Internationaler Kon- gress ϋber tropische Medizin und Malaria, Manila, 9. bis 15. Nov. 1980 Nr. 467, Seiten 289/290) ge- trennt. Aus den so gewonnenen infizierten Erythrocyten werden die Parasiten nach der in Z. Parasitenkunde 58, 151 bis 159 (1979) beschriebenen Methode mit¬ tels Lectinen freigesetzt, durch Zentrifugieren von Erythrocytenbestandteilen abgetrennt und mit¬ tels SDS-Elektrophorese und Enzymmessungen auf Verunreinigungen durch Wirtszellmaterial unter- sucht. Die so isolierten Parasiten werden durch milde Scherkrafte (ϋltraturax/Frenchpress) aufgebrochen und die Membranen ύber einen linearen Dic tegra- dienten (z. B. 0,25 M bis 2,2 M Sucrose, Puffer, Proteinaseinhibitor) in der Ultrazentrifuge (2 Stunden, 65 000 g) aufgetrennt. Alternativ kann die Auftrennung auch durch nor ales Zentrifugieren oder dektrophoretisch erfolgen. Die Membranfraktion wird gewonnen, elektrophore- tisch auf Reinheit ϋberprύft, gewaschen und in einer Menge von 1 mg Membranprotein pro 1 ml Serum der Versuchstiere (Spendertiere des antigenen Ma¬ terials) aufgenommen. III. Immunisierung der Versuchstiere Zur Immunisierung wird eine Gruppe von normalen, nicht vorbehandel en Versuchstieren mit dem nach II. erhaltenen Material (unter Fe-Mangelbedingun- gen gehaltene P. vinckei in Spendertierserum) immunisiert. Eine zweite Gruppe von Versuchstieren wird mit nicht unter Fe-Mangel gehaltenen Erregern als Kontrolle infiziert. Die Immunisierung bzw. Infektion erfolgt durch eine intramuskulare (0,1 ml) und 2 bis 5 al intrakutane I jektion (5 x 10 μl) im Abstand von jeweils einer Woche. Folgende Immunisierungsergebnisse werden erhalten: 1. mit nach II erhaltenem Material a) mit Vollblut +++. b) mit infizierten Erythrocyten alleine (ohne Serumzusatz) ++ c) mit Serum infizierter Tiere alleine - OMPI d) mit Erythrocytenmerαbranen parasitierter Erythrocyten in Serum (Verunreinigung mit Paraεitenmaterial ca. 20 bis 40 %) - e) mit isolierten Paraεiten in Wirtεεerum (Verunreinigung durch Erythrocytenbeεtand- teile unter 10 %) +++ f) mit iεolierten Paraεitenmembranen in Serum deε Spendertiers Kontrolle mit nicht unter Fe-Mangelbedingungen gehal¬ tenen Paraεiten B e i ε p i e l 2 Spraque-Dawley Ratten bis 100 g Kδrpergewicht werden mit P. vinckei, dem Erreger der Nagetiermalaria infi- ziert und mit 2 biε 10 mg Deεferrioxamin εubcutan pro Tag behandelt. Die unbehandelten infizierten Kontroll- tiere εterben etwa 5 bis 6 Tage nach der Infektion und weiεen dann eine Parasitamie von 70 bis 90 % und einen Hamatokrit von 6 bis 10 % auf. Bei den mit Desferrioxa¬ min behandelten Tieren liegt die Parasitamie zu diesem Zeitpunkt zwiεchen 10 und 30 %, bei nur geringfugig er- niedrigtem Hamatokrit. Wird die Behandlung zum Zeitpunkt des Todes der Kontrollgruppe bei den behandelten Ver¬ suchstieren abgebrochen, so versterben die Tiere nach weiteren 3 biε 4 Tagen mit einer hohen Parasitamie. Wird die Behandlung mit Deεferrioxamin weitergefϋhrt, so zeigen εich nach etwa dem 6. Tag die Sympthome einer mittelschweren Paraεitamie. Ab dem 9. -bis 10. Tag nach der Infektion geεunden die Tiere unter der fortgesetz- ten Deεferrioxaminbehandlung εchnell und nach 14 Tagen iεt die eigentliche Infektion abgeklungen. Bei Einεtel- len der Deεferrioxaminbehandlung nach 14 Tagen tritt keine Neuinfektion auf. Werden die Verεuchεtiere, bei denen die Infektion nach 14 Tagen Deεferrioxaminbehandlung abgeheilt ist, erneut infiziert, so tritt keine Infektion auf. Die Tiere εind immun. Eine Gruppe von Verεuchεtieren wird mit einer Reεochin- doεis behandelt, bei der εich ϋber 14 Tage lang eine der Deεferrioxamin behandelten Gruppe vergleichbare Pa- raεitamie entwickelt. Nach Uberεchreiten der 14tagigen Infektionεdauer heilt die Infektion hierbei nicht von alleine ab. Die Tiere erhalten eine kurative Doεis Resochin, biε keine Infektion ehr feεtεtellbar iεt. Dann wird die Reεochingabe abgeεetzt und die geheilten Tiere werden erneut mit dem gleichen Erreger infiziert. Dabei entwickelt εich erneut eine Infektion wie bei nicht vorbehandelten on-trolltieren. Dieε zeigt, daβ auch eine auεgeheilte Infektion mit nicht erfindungεge- maβ unter Hypoferramiebedingungen gewachsenen Parasiten keine Immunisierung bewirkt.

Claims: P a t e n t a n ε p r ϋ c h e 1. Verfahren zur Herεtellung eines Impfstoffes gegen Parasiten, inεbesondere Malariaparasiten, durch Infektion eines Organismuε mit den Paraεiten alε Antigen und Gewinnung von Antiεerum aus dem infi¬ zierten Organismuε, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daβ man mit dem Paraεiten infizierte Erythrocyten in vivo oder in vitro unter Hypoferramiebedingungen wachsen laBt, die Paraεiten auε den Erythrocyten isoliert und die isolierten Parasiten oder Zellwandfragmente derselben als Antigen verwendet. 2. Verfahren nach Anspruch 1, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daβ man Hypo¬ ferramiebedingungen durch Zuεatz eines Eisenchelat- bildners bewirkt. 3. Verfahren nach Anspruch 2, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daβ man einen biologischen Eiεenchelatbildner verwendet. 4. Verfahren nach Anspruch 3, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daβ man alε bio- logiεchen Eiεenchelatbildner Desferrioxamin ver¬ wendet. 5. Verfahren nach Anspruch 3, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daβ man als bio¬ logischen Eisenchelatbildner Endotoxin, Ferritin oder/und Lactoferrin verwendet. 6. Verfahren nach einem der vorhergehenden Anεprϋche, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daB man den Erythrocyten oder deren Wirtεorganiε- us weniger Eisen als zur normalen Entwicklung be- nδtigt, zufϋhrt. 7. Verfahren nach einem der vorhergehenden Anεprϋche, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , dafi man hypoferramische Parasiten bzw. deren Zell¬ wandfragmente in Kombination mit hypoferramischem Serum als Antigen verwendet. 8. Verfahren nach Anspruch 7, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daβ man dem Serum einen Proteinaseinhibitor zuεetzt. 9. Verfahren nach einem der vorhergehenden Anεprϋche, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daβ man das hypoferramische Wachstum des Parasiten ber eine Mehrzahl von Pasεagen fortf hrt. 10. Verfahren nach Anεpruch 9, d a d u r c h g e k e n n z e i c * h n e t , daβ man nach je- weilε 2 bis 8 Passagen den Eisenchelatbildnerzuεatz erhδht. 11. Verfahren nach einem der vorhergehenden Anεprϋche, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daB man bei Z chtung deε Paraεiten in vivo daε Wirtεtier vor der Infektion ein- oder mehrere Tage unter Hypoferramiebedingungen halt. 12. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprϋche, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daB man die hypoferramiεchen Bedingungen mindeβtenε 14 Tage nach der Infektion aufrecht erhalt. /*** R jRE OMPI

Inventors: RUSSELL DONALD JAMES, SANDERS MICHAEL ALLEN, RUSSELL, DONALD, JAMES, SANDERS, MICHAEL, ALLEN
Applicants: HEALTHDYNE INC, HEALTHDYNE, INC.
Application year: 1983
Main classification: A61B5
IPC codes: A61B5, G06F17