MICROORGANISMS, ESPECIALLY E. COLI, TRANSFORMED WITH A DNA SEQUENCE ORIGINATING FROM C. THERMOCELLUM, COMPOSITIONS HAVING A CELLULOLYTIC ACTIVITY ISSUED FROM THESE MICROORGANISMS AND PROCESS TO OBTAIN THEM

Abstract: Distinct micro-organism of C. thermocellum, strict or optional aerobe, preferably comprised of E. coli transformed by a DNA sequence coding for a cellulolytic enzyme, issued from the genetic complement of thermophilic strains of the C. thermocellum type and capable of producing the expression thereof. Said micro-organisms may, after breaking their walls, provide compositions having a cellulolytic activity, more particularly of the endo- beta -1,4-glucanase type, applicable to the treatment of cellulolytic materials at a temperature comprised approximately between 50 and 70<o>C.

Description: Micro-organismes, notamment E. coli, transformés par une séquence d'ADN originaire de C. thermocellum, compositions à activité cellulolytique issues de ces microorganismes et procédé pour les obtenir. L'invention concerne des moyens nouveaux, plus particulièrement des micro-organismes et des procédés nouveaux de production d'enzymes cellulolytiques capables de réaliser la bioconversion des celluloses, hémicelluloses et de leurs dérivés, plus généralement de matières fermentescibles du type oligosaccharides et monosaccharides, lesquelles peuvent à leur tour être transforméespar fermentation notamment en éthanol, acide acétique et acide lactique. Elle concerne encore des compositions ou sources de telles enzymes pouvant être utilisées telles quelles dans des unités industrielles de transformation de matières contenant des proportions substantielles de cellulose ou derivés de cellulose. A titre d'exemple de matières ainsi transformables, on peut citer les matières de rejet municipales (ordures) ou industrielles, ou encore de matières végétales telles que la paille. La bioconversion de matériaux cellulosiques con nat à ce jour un regain d'intérêt ; comme l'attestent les publications par exemple de ZEIKUS, J.G. (1980) Ann. Rev. Microbiol. 34, 423-464 ou de BISARIA, V.S. et GHOSE, T.K. (1981) Enzyme Microbiol. Technol. 3, 90-104. C'est ainsi qu'il a,à cet égard,été prêté une attention particulière au micro-organisme connu sous la désignation Clostridium thermocellum, lequel est apte à produire des quantités importantes d'une enzyme cellulolytique thermostable hautement active, par exemple en des proportions qui peuvent atteindre de l'ordre de 3 mgd'enzyme par litre de culture, après 50 heures d'incubation. L'utilisation de C. thermocellum ne va cependant pas sans difficultés, dans la mesure où il s'agit d'un micro-organisme anaérobie strict, thermophile. Ces caractéristiques en font un micro-organisme dont la culture dans des conditions industrielles est relativement malaisée, le micro-organisme n'étant apte à produire les en zymes cellulolytiques qu'à la condition d'être cultivé à température élevée, notamment à une température de l'ordre de 600C, rigoureusement à l'abri de l'oxygène. L'invention a pour but de fournir des moyens nouveaux de production d'enzymes cellulolytiques, plus faciles à mettre en oeuvre, plus particulièrement aptes à produire des quantités importantes d'enzyme dans un domaine de température plus accessible aux techniques usuelles de fermentation, sans qu'il soit nécessaire par ailleurs d'opérer la mise en oeuvre de ces moyens en l'absence d'oxygène. L'invention découle de la découverte que des sé quences suffisamment courtes de l'ADN de C. thBmoceLum et contenant une séquence de nucléotides codant pour une enzyme cellulolytique pouvait être utilisée pour la transformation de micrd-organismes differents ; ceux-ci devenant alors capables de fabriquer à leur tour des quantités suffsamment importantes d'une enzyme cellulolytique,pour que l'on puisse envisager leur substitution à C. thermocellum, en tant que source d'une enzyme cellulolytique du genre en question. Alors que C. thermocellum n'est capable de produire ces enzymes que lorsqu'il est incubé en milieu strictement désoxygéné et à une température élevée, on a constaté que d'autres microorganismes, notamment des bactéries aérobies, étaient capables de la produire avec des rendements satisfaisants dans leurs conditions de culture normales et à des températures beaucoup plus faibles. A titre d'exemple de ces micro-organismes, on mentionnera surtout EscherichiÅa co-li. Ce dernier type de micro-organisme se révèle particulièrement intéressant en raison de la rapidité du développement de ses cultures. Cette rapidité, combinée avec le-s quantités d'enzymes que ces micro-organismes sont capables de produire, permet d'envisager la production de- quantités d'enzyme par unités de temps, du même ordre de grandeur que celles qui peuvent être obtenues, dans les conditions beaucoup plus difficiles qui ' ont été évoquées plus haut, à partir de C. thermocellum. L'invention concerne par conséquent des microorganismes distincts de C. thermocellum, notamment des bactéries aérobies strictes ou facultatives, plus parti culièrement des E. coli, caractérisés en ce qu'ils sont transformés par une séquence d'ADN codant pour une enzyme cellulolytique, issue du patrimoine génétique des souches thermophiles du type C. thermocellum,dans des conditions permettant son expression dans le microorganisme hôte. Cette séquence est de préférence de longueur suffisamment réduite, de préférence n'excédant pas de l'ordre de 40 kilobases (kb) pour permettre au microorganisme hôte d'en produire une quantité suffisante, telle qu'appréciée notamment par le degré d'activité enzymatique des extraits cellulaires obtenus partir desdites cultures, vi-à-vis de substrats déterminés. De préférence, la susdite séquence a une longueur qui est inférieure a 3 kb. Plus particulièrement l'invention concerne des micro-organismes trans-formés, notamment des E. coli transformés p-ar une séquence d'ADN issue de C. thermocellum et reconnaissables par la capacité de l'enzyme d'induire une diminution de la viscosité de solutions ini tialement visqueuses de carboxyméthylcellulose dissoute dans un tampon approprié. Les micro organismes ainsi transformés seront quelquefois dits l'GMC+",dans la suite de cette demande. Les micro-organsimes transformés par les séquences d1ADN selon l'invention peuvent encore être détectés en ayant recours à une modification de la technique de TEATHER, R.M. et WOOD, P.J. (1982, "Use of Congo redpolysaccharide interactions in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen." Appl. Environ. Microbiol. 43:777-780). Cette méthode repose sur la détection de l'activité CMCase sur plaques. Par exemple, lorsque la technique est appliquée à des clones de E. coli, ceux-ci sont mis en culture pendant une nuit sur un milieu solide LB décrit par MILLER, J.H. (1972, "In -Experiments in molecular genetics". Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York) à 370C. Les plaques sont ensuite recouvertes avec 5 ml du tampon PC (dont la composition est indiquée ci-après) contenant en outre de l'agar à 0,7 % et de la carboxyméthylcellulose (CMC) à 0,5 %. Après 3 heures d'incubation à 60 C, les plaques sont recouvertes d'une solution aqueuse de rouge Congo à 1 %, pendant 1 minute, à la température ambiante. La solution de rouge Congo est ensuite enlevée et les plaques sont lavées avec une solution de NaCl 1M. Les clones actifs, capables de synthétiser la CMCase apparaissent alors avec un halo jaune se détachant sur un fond rouge. L'invention concerne en particulier des E. coli transformés, dont les extraits bruts obtenus après culture des cellules, rupture et séparation des parois cellulaires, conduisent, lorsqu'ils sont mis en contact avec une solution de 1,5 % (poids/volume) de carboxyméthylcellulose dans un tampon PC (50 mM K2HPO4 ; acide citrique 12,5 mM pH 6,3) à raison d'une quantité d'extrait brut contenant 65 yg de protéine, diluée dans 50 ul du mme tampon, par 1 ml de la susdite solution, à une réduction de moitié de la viscosité initiale après 30 minutes et de préférence 10 minutes d'incubation du mélange formé à 600 C. On peut avoir recours pour mesurer la dim-inu- tion de viscosité à toute technique en soi connue, par exemple à la mesure des variations du temps de passage du mélange avant et après incubation à travers des pipettes calibrées du type de celles utilisées couramment en viscosimétrie. Ces mesures peuvent naturellement être effectuées, en ayant recours à tout autre dispositif classique de viscosimétrie. De préférence ces E. coli transformés sont également ceux dont les mêmes extraits bruts conduisent, après contact avec la carboxyméthylcellulose, dans les mêmes proportions que dans le test précédent, à une activité CMCase exprimée en % d'équivalents de glucose libéré d'au moins 0,3 %, de préférence au moins 1 %, après incubation du mélange à 600C pendant 1 heure. Des micro-organismes transformés préférés selon l'invention sont encore ceux qui, outre les caractéristiques quantitatives déjà indiquées, présentent l'une ou l'autre ou encore l'une et l'autre des caractéristiques supplémentaires qui suivent. La première de ces caractéristiques supplémentaire consiste en la capacité des extraits desdits microorganismes d' hydrolyser la trinitrophényl-carboxyméthylcellulose (TNP-CMC ou TCMC). Ces micro-organismes seront ci-apres dits "TCMT+". Les micro-organismes préférés sont ceux dont les extraits bruts sus-indiqués présentent, lorsqu'ils sont utilisés à raison d'une quantité corres -pondant à 65 pg de protéines, une activité TNP-CMCase d'au moins 0,05 unité d'absorbance par heure, après incubation du mélange à 600C. I1 est entendu que, dans ce qui précède, les mesures de variations d'absorbance d'une radiation à une longueur d'onde de 350 nm, s'expriment par rapport à l'action du mélange sur le substrat chromogène constitué par la TNP-CMC, préparé selon la méthode de HUANG et TANG (Anal. Biochem. (1976), 73, 369-377) et par rapport à l'absorption mesurée sur un mélange des constituants évoqués plus haut, après incubation dans les mêmes conditions, cependant en l'absence de l'extrait cellulaire. La seconde des caractéristiques sus-visées desdits micro-organismes consiste en la capacité de l'enzyme cellulolytique contenue dans lesdits extraits d'être réconnue immunologiquement, notamment par exemple dans des tests d'immunodiffusion du type Ouchterlony, par des anticorps préalablement préparés contre l'endo--l,4-glucanase extracellulaire de C. thermocellum, obtenue et purifiée selon la technique décrite par J. PETRE, R. LONGIN et J. MILLET dans Biochimie, 1981, 63, 629-639. Les micro-organismes modifiés sont obtenus à partir de micro-organismes transformables par un vecteur déterminé, lui-même dérivé soit d'un plasmide, soit d'un phage, soit encore d'un cosmide, ce vecteur ayant cependant au préalable été lui-même modifié par un insérat issu de C. thermocellum et contenant une séquence d'ADN codant pour une enzyme cellulolytique. Il va de soi que l'expression 1,insérat issu de C. thermocellum signifie soit une séquence d'ADN provenant directement du patrimoine génétique de C. thermocellum en particulier d'un gène de ce micro-organisme, soit une séquence d'ADN susceptible de coder pour la même enzyme cellulolytique, notamment des séquences résultant du clonage soit du précédent gène, soit d'un cADN correspondant. De préférence, et plus particulièrement lorsque le micro-organisme transformé est constitué par E. coli, on choisit ceux des insérats contenant une séquence codant pour une enzyme cellulolytique qui permette, après transformation et culture de ces micro-organismes, l'ob- tention d'une production par le micro-organisme de lten- zyme cellulolytique en quantité et activité suffisantes pour satisfaire au moins aux conditions minimales déf i- nies plus haut. Sulvant un mode de réalisation préféré de l'invention, l'insérat consiste en une séquence issue de C. thermocellum contenant non seulement le gène ou ADN correspondant codant pour l'enzyme cellulolytique, mais aussi les séquences d'ADN contrôlant l'expression du gène dans C. thermocellum. En particulier l'insérant contient le promoteur sous le contrôle duquel est réalisée ltex- pression du gène dans C. thermocellum. il va de soi que cette condition n'est pas essentielle et que le gène codant pour l'enzyme cellulôlytique peut autre remplacé par une partie seulement de ce gène ou par une séquence d'ADN équivalente, dans la mesure où il code pour un polypeptide comportant des propriétés cellulolytiques. L'invention s'étend naturellement également au-x microorganismes dans lesquels le gène (ou la partie de gène ou séquence d'ADN équivalente) aurait au préalable été placé sous le contrôle de tout promoteur distinct reconnu par les "machineries" assurant la transcription et la traduction de protéines déterminées dans le micro-organisme ho te, notamment un promoteur endogène sous le contrôle duquel se trouvent placés des gènes naturels et susceptibles d'être exprimés dans ce micro-organisme. L'invention fournit également un procédé permettant la sélection de tels insérats, ce procédé consistant à fragmenter l'ADN de C. thermocellum par une enzyme de restriction permettant la production d'un nombre de fragments suffisant, par exemple des fragments Sau 3 AI, l'insertion de ces fragments dans un vecteur, la trans formation de cultures du micro-organisme avec les différents vecteurs modifiés obtenus et la sélection de celles des cultures de cellules productrices de l'enzyme cellulolytique dans les conditions sus-indiquées. Dans un mode de mise en oeuvre préféré de ce procédé de sélection, on a recours à des vecteurs du type cosmide, lesquels permettent l'empaquetage relativement sélectif de fragments comportant notamment de 25 à 50 kb, d'où la possibilité d'obtenir des clones en nombre relativement limité, de sorte que les opérations de sélection s > en trouvent facilitées. L'invention repose en effet sur la capacité de reconnaissance par des hôtes étrangers, notamment par E. coli, des séquences d'ADN et ARN qui contrôlent l'expression des gènes de d. thermocellum, en tous cas d'un certain nombre de gènes susceptibles d'exprimer une enzyme cellulolytique. La capacité des micro-organismes transformés obtenus de synthétiser des enzymes cellulolytiques normalement produites par C. thermocellum est aussi d'autant plus remarquable que le micro-organisme hôte, et plus particulièrement E. coli ne dispose vraisemblablement pas de la machinerie cellulaire permettant l'excrétion de ltenzyme ainsi synthétisée dans le milieu de culture et, par conséquent, la maturation qui très vraisemblablement l'accompagne, dans les cultures de C. thermocellum. Partant d'un clone actif, il est naturellement possible de réisoler l'insérat, d'en faire une analyse de séquences et par refragmentation, d'en isoler des fragments plus petits, de les réinsérer dans un vecteur approprié, tel qu'un plasmide ou un phage, pour déterminer de nouveau ceux des plasmides ou phages ainsi transformés qui,à leur tour,peuvent à nouveau transformer un microorganisme du meme type et finalement de sélectionner ceux des micro-organismes alors rendus capables de syn thétiser l'enzyme cellulolytique. En particulier, cette fragmentation peut être réalisée par des délétions mettant en jeu des enzymes de restriction, dans la mesure où ces délétions n'entraînent pas la perte de la capacité du micro-organisme transformé, avec les insérats ainsi modifiés, d'exprimer une enzyme cellulolytique.Partant d'un plasmide contenant un insérat susceptible d'être exprimé dans un micro-organisme donné, on peut linéariser au niveau d'un site de restriction, manifestement extérieur à la séquence d'ADN intervenant dans l'expression (notamment un site de restriction du vecteur extérieur à l'insérat), émonder de façon contrôlée le plasmide linéarisé avec une enzyme exonucléolytique, telle que l'enzyme Bat31, recirculariser le plasmide au moyen d'un ADN ligase, transformer un microorganisme approprié, initialement transformable par le même vecteur, et détecter, parmi les produits éventuels d'expression du micro-organism. ainsi . transformé, l'éventuelle présence d'une enzyme ou polypeptide cellulolytique, en utilisant notamment l'un des tests mentionnés plus haut, le cycle d'opérations qui vient d'être défini étant répété jusqu'à la disparition de la détection de l'enzyme ou polypeptide cellulolytique antérieurement exprimé par le micro-organisme. il va de soi qu'ne telle opération n'est sérieusement envisageable que dans la mesure où l'on détiendra déjà un fragment d'ADN issu de C. thermocellum ayant une taille suffisamment réduite, pour que le cycle d'opérations qui vient d'être sommairement indiqué n'ait pas besoin d'être répété un trop grand nombre de fois. Ces ope rations, éventuellement complétées par des analyses de séquences appropriées, sont réalisables par l'homme du métier avec les connaissances dont il dispose à ce jour, que ce soit pour isoler une séquence d'ADN correspondant à l'ensemble gène-éléments de régulation dans C.thermocellum ou pour isoler le gène séparé de son promoteur- naturel, dans la mesure où il est destiné à être-mis (en phase) sous le contrôle d'un promoteur distinct. L'invention concerne enfin plus particulièrement les compositions nouvelles présentant une activité cellulolytique, plus particulièrement du type endo-ss-1,4- glucanase, directement applicables au traitement de matières cellulosiques, notamment à une température de l'ordre de 50 à 700C, de préférence de l'ordre de 600C, ces compositions étant constituées - soit par la masse des micro-organismes transformés, plus particulièrement de E. coli dans les condition indiquées plus haut, après séparation du milieu de cul ture et rupture des parois, soit mécaniquement, soit par lyse des parois cellulaires, la composition obtenue pou vant être séchée et/ou utilisée telle quelle, - soit par une composition davantage concentrée ou puri fiée en principes actifs, obtenue a partir de la prépara ration brute ci-dessus. Dans ce dernier cas, la composi tion selon l'invention est formée par les extraits hydro solubles obtenus après séparation des parois bacté riennes et autres résidus purifiés, par exemple jusqu'à atteindre une activité TNP-CMCase de 0,5 unité d'absorbance par heure d'incubation à 600C. La préparation des compositions brutes peut être réalisée par toute méthode en soi connue. En particulier, on peut avoir recours à des procédés mettant éventuellement en jeu une ou des substances chimiques susceptibles de l'accélérer, sans pour autant altérer l'activité enzymatique des préparations en cause, lorsqu'un traitement de simple dessication de la culture ne suffirait pas à causer les ruptures des parois. On peut d'autant plus facilement faciliter cette autolyse par une certaine élévation de température que l'en- zyme cellulolytique recherchée est thermostable. Ltéléva- tion de température présente même l'avantage d'inactiver si besoin la majeure partie des autres enzymes contenues dans les micro-organismes ainsi traités. Le contenu des cellules ainsi rompues peut être récupéré de toute façon en soi connue, notamment après séparation des parois rompues. Aux extraits obtenus peuvent être réunies les solutions de lavage des résidus insolubles. On peut avoir recours pour effectuer ce lavage à toute solution tamponnée compatible avec la préservation de l'activité enzymatique recherchée. La solution obtenue peut ensuite être soumise à des traitements de purification supplémentaire, en ayant recours à des techniques en soi bien connues,par exemple comme celles décrites dans "Encyclopedia of Chemical Technology" de KIRK. OTHMER, vol. 8, 2eme édition. L'invention concerne enfin le procédé de traitement de matières contenant des substances cellulosiques, en vue de produire des substrats du type mono- ou oligosaccharides eux-mêmes fermentescibles en produits utiles, tels que ltéthanol, l'acide acétique et l'acide lactique, caractérisé par la mise en contact de ces matières avec les compositions enzymatiquement actives, selon l'invention, à une température comprise entre 50et 700C, notamment de l'ordre de 600C, pendant le temp-s nécessaire à la réalisation de la lyse contrôlée desdites matières cellulosiques, plus particulièrement de leurs liaisons ss-1,4 glycosyle. Des caractéristiques supplémentaires de l'invention apparaîtront encore au cours de la description qui suit, à titre non limitatif, d'exemples d'obtention de micro-organismes transformés enzymatiquement actifs, et de leurs niveaux dractivité. On se réfèrera à cet égard aux dessins, dans lesquels - la fig. 1 contient des courbes représentatives des acti vités enzymatiques, obtenues à partir d'extraits de micro-organismes transformés, dans des tests d'activité différents ; - les fig. 2a et 2b sont des cartes de restriction de plasmides contenant des séquences codant pour des enzymes cellulolytiques de C. thermocellum-; - les fig. 3a et 3b représentent schématiquement les étapes de l'insertion de séquences d'ADN excisées des plasmides précédents dans pBR322 ; ; - la fig. 4 représente des cartes de restriction de frag ments d'ADN issus du génome de C. thermocellum et conte nant les gènes codant pour des enzymes cellulolytiques - la fig. 5 représente des cartes de restriction de parties des plasmides dérivés de pBR322 (fig. 3a et fig. 3b) ou des plasmides également dérivés de pBR322 et contenant des insérats issus des séquences d'ADN du génome de C. thermocellum, après hybridation avec les insérats des plasmides modifiés des fig. 3a et 3b et clonage de ces séquences, également dans pBR322. On a utilisé, au titre des micro-organismes transformables, E. coli 4282 (leu B6, trp E 38, met E 70 rec A, sup E) (déposé au E. coli Genetic Stock Center à la Yale University et décrit par BERG et CURTISS 1967, Genetics 56 > 503 déposé également le 2 juillet 1982 à la C.N.C.M. sous le nO I-197) et E. coli HB101 (pro leu thi hsdR rec A) (déposé à la C.N.C.M. sous le nO I-196). Le cosmide utilisé a été pHC79, décrit par HOHN B. et COLLINS J. (1980) Gene, 11, 291-298 et commercialisé par BOEHRINGER MANNHEIM. Obtention de l'ADN de C. thermocellum. De 1'ADN total de C. thermocellum, obtenu à partir d'une culture de la souche NCIB 10682 dans le milieu complet décrit par PETRE J. et coll. (1981) Biochimie 63,629 - 639 a été isolé par la méthode décrite par MARMUR J. (1961) J.Mol.Biol.3,208 - 218,cependant modifiée par un traitement supplémentaire avec de la protéinase K (1 mg/ml). L'ADN de plasmide tel qu'obtenu à partir des cultures de E.coli 4282 a été purifié selon la méthode de HUMPHREYS F. et cool. (1975) Biochim. Biophys. Acta 383,457 - 463. On a également eu recours aux techniques décrites par BIRNBOIM, H.C.et DOLY,J.(1979) Nucl. Acids. Res., 7,1513 - 1523, pour les extractions rapides d'ADN à partir de cultures de 1 ml. Construction d'une banque de gènes de C.thermocellum Des échantillons contenant 5g d'ADN de C.thermocellum ont été digérés en présence de 0,5 unité de l'enzyme Sau3AI (Biolabs) pendant des durées de 5, 10 et 20 minutes. Après digestion, les échantillons ont été réunis. 5 pg d'ADN du mélange ont été ajoutés à Sug de pHC 79,préalablement digérés par l'enzyme de restric tion BamHl (Biolabs), au sein d'un volume total de 30 1. Après ligation en présence de l unité de T4 DNA-ligase (BOEHRINGER) pendant 16 heures à 100C, l'ADN a été purifié par extraction au phénol et précipitation par l'éthanol, puis remis en suspension dans 30 p1 1 d'un tampon 4 d'empaquetage tel que décrit par HOHN B. et COLLINS J. déjà mentionnés plus haut. 15 p1 de cette solution ont été alors utilisés pour réaliser l'empaquetage in vitro dans des têtes de phages X ,également selon la méthode de HOHN et COLLINS. Les phages obtenus ont été utilisés pour infecter des cultures de E.coli 4282. Mille cinq (Ampr) cents clones ampicilline-résistants (Amp ) ont été isolés. s. parmi ces derniers 1200 se sont également révélés Tet Ils constituent. la susdite banque de genes de C.thermocellum. Une partie des 1200 clones Ampr Tets ont ensuite été analysés du point de vue de leur contenu en ADN plasmidi que. Les tailles des insérats se sont révélées varier de 25 à 40 kb. Les cosmides recombinants ainsi obtenus ont été numérotés de 1 à 1200 (antérieurement de pCT1 à pCT1200). Les clones de E.coli 4282 ont été mis en culture pendant la nuit dans le milieu connu sous le nom de "bouillon de LURIA" (MILLER, J.H., Experiments in Molecular Genetics; Cold Spring Harbour Labora tory, 1972, page 433) contenant 50 50ug/ml d'ampicilline. Les cellules sont reprises dans le tampon PC jusqu'S obtenir une valeur d'absorption de 15 à 570 nm. Les cellules sont alors rompues mécaniquement par sonication. La solution obtenue, après séparation des fractions insolubles, a été utilisée telle quelle dans les essais pour mesurer la diminution de la visco sité d'une solution de CMC et pour mesurer la libération de groupes réducteurs dans cette même solution. Pour ceux des clones qui ont été retenus comme capables de produire une enzyme cellulolytique, on a également réalisé des extraits bruts à partir de suspensions de cellules ayant une densité optique de 75 à 570nm, et l'on a soumis lesdits extraits bruts obtenus aux étapes de purification supplémentaires qui suivent: - chauffage de la solution obtenue à 600C pendant 5 minutes, - précipitation des protéines par addition de sulfate d'ammonium jusqu'à atteindre une concentration finale de 90% de saturation, - reprise du précipité dans le tampon PC, - dialyse de la précédente solution contre le tampon PC, jusqu'à élimination du sulfate d'ammonium avec ajustement de concentration de la solution enzymatique par de l'AQUA- CID III (Calbiochem). La concentration finale est de 1/25 par rapport au volume initial de l'extrait brut. Détection des clones producteurs d'une activité cellu lolytique Les extraits bruts des 1200 clones de la banque ont été réunis 10 par 10 et les extraits bruts obtenus testés pour leur activité CMCase par la méthode viscosimétrique, en raison de l'extrême sensibilité de cette dernière. Deux des extraits bruts mélangés permirent d'obtenir des résultats positifs. Le test fut alors répété sur les extraits bruts obtenus à partir des clones isolés correspondants. Deux clones porteurs des cosmides pCT182 et pCT262, ensuite redésignés par pCT1 et pCT2, avaient acquis la capacité dlinduire la dépolymérisation de la CMC. Ce sont les nouvelles désignations pCT1 et pCT2 qui sont utilisées pour ces clones dans ce qui suit. La méthode de viscosimétrie utilisée pour apprécier l'effet de dépolymérisation induit par les extraits bruts obtenus à partir des clones pCT1 et pCT2 , a été décrite par ALMIN K.E. et Col. (1975) Eur. J. Biochem. 51, 207-211. Le principe de la méthode a été rappelé plus haut en rapport avec la définition des micro-organismes préférés de l'invention (E. coli). La variation de viscosité a été appréciée par la mesure du temps de passage d'un échantillon du mélange réactionnel de 0,2 ml à travers une pipette KIMAX 51 ne 37 022 de 0,2 ml, à température ambiante. Le mélange était constitué par 1 ml de CMC à 1,5 % dans le tampon PC et 50 p1 d'extrait brut. Les courbes 1 et 4 de la fig. 1 sont représentatives des variations de ce temps de passage, en secondes, en fonction de durées d'incubation croissantes telles qu'obtenues à partir des mélanges de CMC et, respectivement, des extraits de E. coli (pCT1) et E. coli (pCT 2). Les extraits bruts obtenus à partir des deux clones sus-indiqués ont également été testés du point de vue de leur activité CMCase et TNP-CMCase dans des conditions qui ont également été indiquées plus haut, en rapport avec les catégories d'E. coli transformées préférées selon l'invention. En ce qui concerne l'activité CMCase, on remarquera qu'elle a été appréciée par la mesure de la quantité de sucres réducteurs libérés à partir de la CMC, par la méthode de SOMOGYI-NELSON (1944) J. Biol. Chem. 153, 375-380. Les courbes 2 et 3 sont respectivement représentatives des variations des activités CMCase (en % d'équivalents glucose libérés sur l'axe des ordonnées) et TNP CMCase (en unités d'absorbance sur un autre axe des ordonnées) des extraits bruts obtenus à partir des E.coli transformés par pCT1. Les courbes 5 et 6 sont représentatives des activités CMCase et TNP-CMCase appréciées dans les mêmes conditions que celles des E. coli transformés par pCT2. On remarque à l'examen de la fig. 1 que les extraits, tant d'E. coli 4282 (pCT1) que dlE.coli 4282 (pCT2) induisent une décroissance rapide de viscosité des solutions de carboxyméthylcellulose avec, dans chaque cas, un accroissement progressif de la quantité de sucres réducteurs libérés en fonction du temps. Par contre, seul E. coli 4282 (pCT1) s'est également révélé posséder une activité TNP-CMCase significative. Des essais réalisés avec les extraits bruts obtenus à partir de E. coli 4282 transformés par le vecteur pHC 79, utilisés à titre de témoins, se sont révélés ne posséder aucune activité détectable CMCase ou TNP-CMCase. E. coli 4282 (pCT1) et E. coli 4282 (pCT2) sont déposés à la C.N.C.M. sous les nO I-228 et I-229, respectivement, le 4 juillet 1983. Dans ce qui suit, le gène codant pour enzyme cellulolytique contenue dans pCT1 sera dénommé celA et celui contenu dans pCT2 sera appelé celB. Les plasmides pCT101 et pCT203 dont les cartes de restriction sont indiqués dans les fig. 2a et 2b ont été obtenus au terme de la délétion d'un fragment EcoRI initialement contenu dans les insérats de pCT1 et pCT2, respectivement. Ces délétions (de plus de 9/10 des insérats initiaux) n'ont pas entraîné la perte de la capacité des plasmides recircularisés (au moyen d'un ADN-ligase) de rendre des cellules de E. coli capables d'exprimer des enzymes cellulolytiques apparemment identiques à celles qui étaient exprimées par pCT1 et pCT2 respectivement. En d'autres termes, les deux plasmides pCT101 et pCT203 étaient toujours aptes à conférer le phénotype CMC à E. coli. Les délétions se sont donc manifestées par une réduction des tailies des plasmides concernés, de 35 kb à 12,5 kb en ce qui concerne pCT1 et de 40 kb à 10,3 kb en ce qui concerne pCT2. Il est à remarquer que dans les figures 2a et 2b les parties en trait plein sont originaires du cosmide initial pHC79 et les parties en trait fin de la séquence d'ADN de C.thermocellum. Les fragments délimités par des sites HindIII peuvent encore être délétés sans perte par les plasmides recircularisés, qui peuvent être obtenus après récircularisation, de conférer le caractère CMC à des cellules de E. coli. L'excision des fragments SalI Hindili et BamHI - HindIII (dont les positions respectives dans les plasmides pCT101 et pCT203 sont schématisées par des arcs en trait interrompusdans les fig. 2a et 2b) et leur insertion dans pBR322,.selon les schémas des figures 3a et 3b, ont conduit aux plasmides pCTîO3 et pCT207 (de 6,8 et 6,7 kb, respectivement), qui sont toujours encore aptes à conférer le phénotype CMC à E. coli et à rendre ce dernier type de microorganisme capable de synthétiser des quantités importantes des enzymes cellulolytiques correspondantes. Les susdites séquences SalI - HindIII et BamHI HindIII ont également été utilisées pour détecter après hydrolyse du génome de C. thermocellum par les enzymes EcoRI, BamHI, HindIII et BglII, ceux des fragments de restriction obtenus qui pouvaient contenir les gènes codant pour les susdites enzymes cellulolytiques. La détection a été réalisée selon la méthode classique d'hybridation de SOUTHERN. Les tailles des fragments de restriction obtenus figurent dans le tableau I ci-dessous. Ces fragments se sont révélés contenir celA et celB. TABLEAU I EMI18.1 <tb> <SEP> celA <SEP> celB <tb> Endonucléases <tb> <SEP> kb <SEP> kb <tb> BamHI <SEP> 6,2 <SEP> 9J7 <SEP> 14 <tb> BglII <SEP> 26 <SEP> 4,4 <SEP> 11 <tb> EcoRI <SEP> 9,7 <SEP> 6,0 <tb> HindIII <SEP> 3,4 <SEP> 3,6 <tb> Des examens comparés de ces résultats et des analyses des restrictions effectuées tant sur ces fragments que sur les plasmides pCT101 et pCT203 ont été déduites les cartes de restriction des séquences correspondantes du génome. Ces cartes de restriction sont schématiquement indiquées dans la fig. 4, dans laquelle les lettres ont les significations suivantes B : BamHI, Bg : BglII, H : HindIII ; P : PstI, R : EcoRI. Les rectangles allongés apparaissant dans la fig. 4 correspondent aux fragments du génome qui contiennent respectivement les gènes celA et celB. Le fragment celA comprend moins de 3 kb, contient un site BamHI unique et est dépourvu de site BglII,EcoRI et HindIII. La séquence contenant celB contient moins de 3kb, ne comporte qutun seul site BgllI et est dépourvu de site BamHI, EcoRI et HindIII. Des fragments d'ADN contenant les susdites séquences et délimités par des sites Hindili ont été réinsérés dans des directions opposées dans pBR322. Ces fragments avaient des tailles de 3,4 et 3,6 kb respectivement. il en est résulté deux paires de plasmides pour chacun des gènes celA et celB. Les plasmides pCT104 et pCTîO5 contiennent le fragment celA orienté dans deux directions opposées. Les plasmides pCT208 et pCT209 contiennent le fragment celB, également orlenté dans deux directions opposées. Les parties concernées des plasmides ainsi obtenus3 et à titre de comparaison, les parties correspondantes de pCT:1O3 et pCT207 sont schématisées dans la fig. 5. Ces plasmides peuvent tous être utilisés pour transformer E. coli, par exemple E. coli HO101 ou des E. coli formant des "mini-cellules" (de l'anglais minicells), et les rendre aptes à produire d'importantes quantités d'enzyme cellulolytique , détectables et récupérables dans les conditions qui ont été- indiquées plus haut. Le fait que les gènes contenus dans les susdits insérats soient exprimés, quelle que soit leur orientation dans les plasmides récepteurs, fonde. la présomption que les insérats en question contiennent non seulement un gène susceptible d'être exprimé, mals les séquences qui, dans l'hôte naturel assurent la régulation de la transcription et de la traduction de ce gène . En outre, ces résultats soutiennent aussi l'hypothèse que les machineries contrôlant normalement la transcription et la traduction dans E. coli sont également capables de reconnaître ces éléments de régulation. Essais immunologiques Ils ont été réalisés avec un immunsérum préparé contre l'endo-ss-1,4-glucanase de C. thermocellum purifiée selon la méthode décrite par PETRE J. et Coll.(glucanase A). L'immunsérum a été obtenu après injection à des lapins de 0,25 mg de l'enzyme purifiée préalablement émulsionnée dans l'adjuvant de Freund, en présence de sérum albumine bovine. Les injections ont été faites régulièrement toutes les trois semaines. Les sérums ont été prélevés sur ces lapins, après que ceux-ci eurent respectivement reçu trois injections d'enzyme. Seul l'extrait d'E. coli 4282 (pCT1) donne, dans les tests d'immuno-diffusion d'OUCHTERLONY, une ligne de précipitation sans éperon avec celle formée par l1endo--I,4-glucanase de C. thermocellum testée dans des conditions analogues. Des résultats semblables ont été obtenus avec les produits d'expression de E. coli 4282 (pCT104). I1 est possible d'isoler après électrophorèse, notamment sur un gel de polyacrylamide, des polypeptides dans des bandes de poids moléculaires de 56.500, 55.000 et 50.200 (glucanases B).Elles sont immunoprécipitées par 1' inuiiinsérum susdit. Par contre, aucune réaction nTa été observée avec les produits d'expression des souches E. coli 4282 (pCT2) et E. coli 4282 (pHC 79). De même, l'addition de 5 pl de l'antisérum susdit à 50 ul d'extrait brut d'E. coli 4282 (pCT1) entraine une inhibition de 85 % de l'activité CMCase mesurée par le test de viscosimétrie. Au contraire, aucune inhibition de ce type n'est observée avec l'extrait de E. coli 4282 (pCT 2). De ces essais, il résulte que PCT1 porte vraisemblablement le gène de C. thermocellum codant pour l'endo- ssl,4 glucanase connue de C. thermocellum. L'insérat contenu dans pCT2 contient un gène codant pour une autre enzyme cellulolytique également synthétisée par C. thermocellum. Cela paraît confirmé par le fait qu'un antisérum préalablement préparé contre la glucanase B contenuedans la bande de poids moléculaire de l'ordre de 66.000 (obtenue par séparation électrophorétique sur gel depolyacrylamide) parmi les produits d'expression de E. coli. HB101 (pCT108) ne réagit pas avec les produits d'expression de E. coli 4182 (pCT1). Les niveaux d'activité enzymatique produite par les deux souches de E.coli 4282 (pCT1) et E. coli 4282 (pCT 2) et, plus généralement des souches de E. coli transformées par un recombinant contenant celA et celB,sont très élevées. En particulier, l'activité TNP-CMCase à 600C par mg de protéines de E. coli 4282 (pCTî) est de l'ordre de 30 % de celle qui peut être observée dans les mêmes conditions dans le milieu de culture de C. thermocellum, après 50 heures de croissance, c'est-à-dire à une vitesse de culture de l'ordre de quatre à cinq fois inférieure à celle de E. coli. Les souches de E. coli transformées par l'un ou/et l'autre des recombinants sus-décrits sont des microorganisme s de choix pour produire dans les conditions qui ont été définies plus haut une activité cellulolytique en raison des conditions de culture industriellement favorables telles que - rapidité de multiplication, - culture en anaérobiose non stricte, utilisation de substrats bon marché tels que mélasses. L'invention concerne donc encore en particulier des micro-organismes aérobies stricts ou facultatifs, carac térisés par leur capacité à produire une enzyme cellulolytique reconnue par un immunsérum, préalablement formé contre au moins une enzyme cellulolytique produite par C. thermocellum. En particulier, l'invention concerne un micro-organisme aérobie strict ou facultatif, produire sant au moins une enzyme cellulolytique ayant un poids moléculaire de l'ordre de 50.200, 55.000, 56.500 ou 66.000. A titre de micro-organisme préféré, on citera ceux qui produisent une enzyme cellulolytique reconnue par un immunsérum préalablement formé contre l'une des glucanases A ou B codées par tout ou partie du gène celA ou celB. Il va de soi que l'on peut avoir recours pour cette reconnaissance à des réactions immunologiques appropriées in vitro, notamment par immunoprécipitation. Les micro-organismes préférés sont dérivés de E. coli. Ils sont capables notamment de fournir des extraits bruts présentant des activités CMCase et/ou TNP-CMCase élevées. Les indications de poids moléculaire qui précèdent ont été appréciées par rapport aux distances de migration de protéines étalons dans un même système électrophorétique, sur gel de polyacrylamide-dodécyl-sulfate de sodium à 10 % > selon la technique de LAMMLI, U.K.(1970). lavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4'!.Nature 227:680-685 myosine 200 kdal ; phosphorylase b 92,5 kdal ; sérumalbumine bovine 69 kdal ; ovalbumine 46 kdal ; anhydrase carbonique 30 kdal ; lyzozyme 14,3 kdal. Les séparations de fragments d'ADN dont question plus haut ont été effectuées dans un tampon borate comme décrit par MANIATIS et Coll.("Molecular cloning, a laboratory manual".Cold Spring Harbor Laboratory, New York). Les fragments de restriction ont été récupérés à partir des gels par électro-élution. D'une façon générale, la transformation de E; coli a été effectuée selon la méthode de COHEN et Coll.("Non chromosomal antibiotic resistance in bacteria : genetic transformation of Escherichia coli by R-factor DNA't.Proc. Natl. Acad. Sci. 69:2110-2114). Les sondes d1ADN ont été marquées avec (a-32P) d'ATP par la technique dite de "nick-translation" (RIGBY et Coll. 1977. "Labeling deoxyribonuc-leic acid to high specific activity in vitro by nick translation with DNA polymerase". I. J. Mol. Biol. 113: 237-25 L ) . Les hybridations ont été réalisées par la méthode de SOUTHERN (1975. Détection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis". J. Mol. Biol. 98:503-517). L'invention ne se limite évidemment pas aux modes de réalisation décrits ci-dessus à titre d'exemples et l'homme de métier peut y apporter des modificationss sans pour autant sortir du cadre des revendications ciaprès ; bien entendu, on peut avoir recours à tous mutants ou variants de E. coli ou à de nombreux microorganismes autres que E. coli, dans la mesure où ils ont été rendus capables de synthétiser les susdites enzymes cellulolytiques. Il s'agit par exemple d'autres entérobactéries, ou d'autres genres ou espèces, telles que les Wacillaceae, par exemple B. subtils, ou encore de levures, par exemple Saccharomyces cerevisiae. il est entendu que l'on aura recours dans chaque cas aux vecteurs appropriés, susceptibles de transformer le micro-organisme choisi et dont de nombreux exemples ont déjà été décrits dans la littérature, lesdits vecteurs ayant naturellement au préalable été modifiés par une séquence originaire de C. thermocellum et apte à coder pour une enzyme douée de propriétés cellulolytiques. Dans le cas de S. cerevisiae, il s'agit par exemple de levures transformées par le plasmide 2 , dans lequel aura été insérée l'une des séquences celA ou celB décrites cidessus. D'une façon générale, on aura recours à un vecteur ainsi modifié, dans laquel la séquence originaire de C. thermocellum aura, si besoin, été insérée d proximité dgun promoteur ou d'une séquence susceptible d'agir en tant que promoteur/ ledit promoteur étant apte à être reconnu par une ARN-polymérase endocellulaire du. micro-organisme destiné à être transformé par ledit vecteur.

Claims: REVENDIGATIONS 1 - Micro-organisme distinct de C. thermocellum, aérobie strict ou facultatif, transformé par une séquence d'ADN codant pour une enzyme cellulolytique, issue du patrimoine génétique des souches thermophiles du type C. thermocellum et capable d'en produire l'expression. 2 - Micro-organisme- selon la revendication 1, carac terisé en ce qu'il est dérivé de E. coli. 3 - Micro-organisme selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce que la susdite séquence d'ADN a une taille n'excédant pas de l'ordre de 40 kilobases et est telle que les extraits bruts obtenus, après culture des cellules, rupture et séparation des parois cellulaires, conduisent, lorsqutils sont mis en contact avec une solution de 1,4 % (poids/volume) de carboxyméthylcellulose dans un tampon PC (5O mM K2HPO4 ; acide citrique 12,5 mM ; pH 6,3) à raison d'une quantité d'extrait brut contenant 65 ijg de protéine, diluée dans 50 pl du meme tampon par 1 ml de la susdite solution, à une réduction au moins de moitié de la viscosité initiale après 30 minutes et de préférence 10 minutes d'incubation du mélange formé à 60 C. 4 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que la susdite séquence d'ADN a une taille n-'excédant pas de l'ordre de 40 kilobases et est telle que les extraits bruts obtenus, après culture des cellules, rupture et séparation des parois cellulaires, conduisent, après contact avec la carboxyméthylceliulose, dans les mêmes proportions que dans la revendication 3, à une activité CMCase exprimée en % d'équivalents de glucose libéré d'au moins 0,3 % de préférence au moins 1 %, après incubation du mélange à 600C pendant 1 heure. 5 - Micro-organisme selon la revendication 3 ou la revendication 4, caractérisé en ce que les susdits extraits bruts possèdent en outre la capacité d'hydrolyser la trini trophényl-carboxyméthylcellulose lorsqu' ils sont utilisés à raison d'une quantité correspondant à 65 ug de protéines, une activité TNP-CMCase d1au moins 0,05 unité d'absorbance par heure, après incubation du mélange a 60 C. 6 - Micro-organisme selon l'une quelconque des revendications 3, 4 et 5, caractérisé en ce que l'enzyme cellulolytique contenue dans ledit extrait brut est reconnue immunologiquement dans des tests d'immunodiffusion du type Ouchterlony, par des anticorps préalablement préparés contre ltendo-ssl,4-glucanase extracellulaire de C. thermocellum. 7 - Micro-organisme selon la revendication 3 ou la revendication 4, caractérisé en ce que l'enzyme cellulolytique contenue dans ledit extrait brut est reconnue immunologiquement dans des tests d'immuno-diffusion du type Ouchterlony, par des anticorps préalablement préparés contre la glucanase B de C. thermocellum. 8 - Vecteur pour l'obtention des micro-organismes selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'il consiste en un cosmide contenant la susdite séquence d'ADN de C. thermocellum, ce cosmide étant du type de ceux qui permettent l'empaquetage relativement sélectif de fragments comportant de 25 à 50 kilobases. 9 - Vecteur pour l'obtention des micro-organismes selon l'une quelconque des revendications I à 7, caractérisé en ce qu'il consiste en un plasmide ou phage transformé par une séquence issue de celle définie dans la revendice tion 8 et capable de transformer les susdits micro-organismes en les rendant capables de synthétiser la susdite enzyme cellulolytique. 10 - Vecteur pour l'obtention de micro-organismes selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce qutil consiste en un plasmide contenant une séquence d'ADN de C. thermocellum, dont la taille n'excède pas 3 kb. Il - Vecteur selon l'une quelconque des revendications 8 à 10, caractérisé en ce que la sequence d'ADN de C. thermocellum contint, outre le gène codant pour l'enzyme cellulolytique, les éléments de régulation qui contrôlent dans la cellule d'origine la transcription et la traduction de ce gène.

Inventors: AUBERT, JEAN-PAUL, CORNET, PHILIPPE, MILLET, JACQUELINE
Applicants: INSTITUT PASTEUR
Application year: 1983
Main classification: C12N15
IPC codes: C12N15, C12N9, C12N1