REAGENT FOR THE DIAGNOSIS OF PARASITOSIS AND ALLERGIES, METHOD FOR THE PREPARATION OF THIS REAGENT AND METHOD OF DIAGNOSING PARASITOSIS AND ALLERGIES USING THIS REAGENT

Abstract: Improvements to a process for the preparation of a reagent for the diagnostic of parasitosis and allergia wherein the medium for the separation of basophiles contains Hepes buffer, polyvinylpyrrolidone and a water-soluble iodobenzylic acid salt, the use of such a separation medium enabling to avoid a previous centrifugation of the total blood sample taken. Improvements to diagnostic reagents for the application thereof to troubles and diseases causing an increase of specific circulating immunoglobulines, and particularly IgE, and to the simultaneous diagnosis of a plurality of parasitosis and/or allergia.

Description: La présenteinventionest relative à des perfectionnements apportés au procédé de préparation du réactif de diagnostic des parasitoses et des allergies qui fait l'objet du B.F. N079 16772 , elle est plus particulièrement relative à des perfectionnements apportés aux milieux de séparation utilisés pour recueillir les cellules basophiles qui constituent ledit réactif. Comme on le sait (cf.Br.Fr.79 16772) ,la centrifugation d'un échantillon de sang prélevé chez un patient humain ou animal supposé allergique ou atteint d'une parasitose, provoque la séparation d'une couche leucocytaire et d'un plasma surnageant ; après rejet du plasma, la couche leucocytaire est reprise par un tampon non destructeur à l'égard des cellules basophiles, avantageusement constitué par du tampon Hépès CM ou Pipès, après quoi un liquide de densité 1,079-1,085 est injecté sous la suspension ainsi obtenue, pour permettre la séparation des basophiles et l'obtention finale du réactif de diagnostic constitué par une suspension riche en cellules basophiles. Une composition du tampon utilisé pour reprendre la couche leucocytaire, donnée à titre d'exemple dans le Brevet sus-indiqué, est la suivante Hépès, solution molaire 25 ml KCl 10 % 0,932 ml CaCl2 10 % 0,550 ml MgC12 10 % 0,510 ml NaCl 9 %o (7,6 g) 844,11 ml H20 distillée qsp 1000 ml pH 7,4-7,6 Le liquide de densité 1,079-1,085 mis en oeuvre pour la séparation des cellules basophiles est défini comme présentant une osmolarité comprise entre 280 et 320 milliosmoles et étant avantageusement constitué par un mélange de métrizoate de sodium et de "Ficoll" (qui est un polymère de saccharose et d'épichlorhydrine) ou de <RTI ID=1.13> "Percoll't (qui est une solution colloïdale de silice enrobée de polyvinylpyrrolidone) et ayant de préférence la composition suivante : Métrizoate de sodium 15 g "Ficoll" 12,867 g Eau qsp 165,8 ml La Demande de Brevet français N080 11689 a proposé une composition quelque peu modifiée pour ledit milieu tampon, laquelle est la suivante, à titre d'exemple Hépès, solution molaire 4 à 25 ml KCl 10 % 0,932 ml CaCl2 10 % 0,550 ml MgCl2 10 % 0,510 ml NaCl 9 %O 850 à 900 mi Eau qsp 1000 ml pH 7,4-7,6 r la composition du liquide de densité utilisé pour la séparation des cellules basophiles n'étant pas modifiée par rapport au Brevet principal. Autre part, la Demande de Brevet N0SO 11689 a proposé des perfectionnements au procédé de préparation du réactif de diagnostic des parasitoses et des allergies conforme au Brevet N079 16772 Alors que selon le Brevet 1 N079 16774la couche leucocytaire qui s'est séparée à la suite d'une opération de centrifugation effectuée sur du sang total, est reprise, après rejet du plasma, par un milieu tampon tel qu'indiqué ci-dessus, après quoi les cellules basophiles sont séparées au moyen d'un liquide de densité 1,079-1,085 injecté sous la suspension de leucocytes dans le milieu tampon, selon la Demande de Brevet N080 11689,il est possible d'obtenir la séparation des basophiles sans avoir à procéder à la centrifugation préalable du sang total : en effet, la séparation des cellules basophiles au moyen du liquide de densité sousjacent est effectuée à partir d'un mélange volume/volume de sang total et d'un tampon Bépès de composition appropriée contenant de l'héparine, le sang total ayant avanta geusement été prélevé sur de l'éthylènediaminetétraacétate de potassium (EDTA K3). Le tampon utilisé en pareil cas présente avantageusement la composition suivante : Hépès, solution molaire 4 à 25 ml KCl 10 % 0,932 ml NaCl 9 %O 850 à 900 ml Héparine 5 à 20 unités/ml et de préférence 10 unités/ml Eau qsp 1000 ml pH 7,4-7,6 L'utilisation d'un tampon Hépès contenant de l'héparine a permis de supprimer une première étape de centrifugation destinée à séparer la couche leucocytaire du plasma pour la traiter par le liquide de densité en vue de la séparation des basophiles, et de simplifier, par conséquent, le procédé de séparation des basophiles en traitant directement un mélange de sang total et de tampon Bépès hépariné par le liquide de densité. La présente invention a pour but de simplifier encore le procédé de séparation des basophiles selon les Brevet N079 16772 et Demande de Brevet n080 11689,tout en conservant les avantages et plus particulièrement l'avantage représenté par la concentration élevée en polynucléaires basophiles du réactif et l'avantage représenté par le taux élevé de. dégranulation observé dans le test de diagnostic des allergies et des parasitoses réalisé à l'aide du réactif. Conformément à la présente invention, le procédé de préparation du réactif de diagnostic des parasitoses et des allergies consiste à déposer un échantillon de sang total prélevé de préférence en milieu d'acide éthylènediaminetétraacétique ou de l'un de ses sels, chez un patient humain ou animal supposé atteint d'une parasitose ou d'une allergie, mélange à un volume égal du tampon Hépès hépariné décrit ci-dessus, sur un milieu de séparation des basophiles qui contient principalement du tampon Hépès, de la polyvinylpyrrolidone et un sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1,077-1,085, puis à centrifuger cette composition pendant une durée et à une vitesse appropriées, pour obtenir un anneau contenant les basophiles et les lymphocytes, lequel est prélevé et lavé soigneusement avec du tampon Hépès de composition appropriée qui est ensuite rejeté pour ne conserver que le culot cellulaire qui, après remise en suspension, est prêt à être déposé dans les puits d'une lame ou d'une boîte de lecture de diagnostic dans certains desquels a été préalablement introduit du tampon et dans certains autres desquels ont été préalablement introduits des dilutions d'allergène(s) ou d'antigène(s) parasitaire(s). Selon un mode de réalisation avantageux du milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre conformément à la présente invention,celui-ci contient de préférence de l'héparine, de préférence sous la forme de l'un de ses sels alcalins et plus particulièrement de son sel de sodium. Selon un autre mode de réalisation avantageux du milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre conformément à la présente invention, le sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble qu'il comprend, est avantageusement pris dans le groupe qui comprend des sels d'acides triiodo- ou hexaiodobenzéniques hydrosolubles et plus particulièrement l'ioxitalamate de sodium et/ou de méglumine, l'ioxitalamate de méglumine et de monoéthanolamine, l'ioxaglate de sodium et/ou de méglumine, etc... Selon encore un autre mode de réalisation avantageux du milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre conformément à la présente invention, celui-ci est constitué par une solution aqueuse contenant principalement de 3,5 à 55 ml/litre de tampon Hépès, de 5 à 30 g/litre de polyvinylpyrrolidone, de 220 à 250 ml/litre de sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble. Le milieu de séparation des basophiles conforme à la présente invention présente avantageusement la composition suivante Hélés, solution molaire 3,5 à 5,5 ml KCl 10 % 0,49 ml NaCl 9 % 45-48 ml Héparine sous la forme de l'un de ses sels alcalins 2500-7500 unités Polyvinylpyrrolidone 5-30 g Sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble 220-250 ml Eau qsp 1 litre Densité 1,079-1,085 pH 7,35-7,50 à 37*C Conformément à la présente invention, le kit prêt à l'emploi pour la réalisation du test de diagnostic des parasitoses et des allergies comprend - un ensemble de composants pour la séparation des cellules basophiles, constitués par une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédosée d'un milieu de séparation des basophiles conforme à la présente invention, et une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédosée de tampon Hépès non destructeur à l'égard des cellules basophiles, pour le lavage de l'anneau lymphocytaire séparé par le milieu de séparation ; - et un ensemble de composants pour la réalisation du test de diagnostic, constitués par une pluralité de lames ou de boîtes de lecture de diagnostic, présentant chacune un certain nombre de puits dont la majeure partie, à l'exception des puits témoins, sont destinés à recevoir des quantités prédéterminées variables d'un ou de plusieurs antigènes spécifiques d'une ou de plusieurs allergies ou d'une ou plusieurs parasitoses à diagnostiquer ou à dépister, - une pluralité d'ampoules ou de tubes renfermant des quantités prédosées d'une solution de fixation et de coloration rapides, simultanées, du type des solutions telles que définies dans la Demande de Brevet français N082 11689, un tube de milieu ae montage optique destiné à être disposé entre les lames de lecture préparées pour le diagnostic et des lamelles de protection, - et une pluralité de lamelles de protection. Grâce à la mise au point d'un milieu de séparation approprié, c'est le sang prélevé (avantageusement sur du sel de potassium de l'acide éthylènediaminetétraacétique) préalablement mélangé avec du tampon Hépès, qui est directement déposé, sans centrifugation préalable, sur le milieu de densité qui réalise la séparation lors d'une centrifugation postérieure, ce processus simplifié étant rendu possible par la présence dans le milieu de densité, d'un composé iodé qui favorise la séparation de l'anneau contenant les basophiles et les lymphocytes. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions qui ressortiront de la description qui va suivre. L'invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à un exemple de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invention. Il doit être bien entendu, toutefois, que cet exemple de mise en oeuvre est donné uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont il ne constitue en aucune manière une limitation. EXEMPLE I- Préparation d'un réactif de diagnostic de parasitoses et d'allergies 1-- On prélève chez un patient à jeûn, supposé atteint d'une ou de plusieurs parasitoses ou allergies, 5 ml de sang veineux sur de l'EDTA K3 pour avoir une concentration finale de 1,5 mg d'EDTA K3 par ml de sang ; on le mélange à 5 ml de tampon Hépès contenant de l'héparine. 2- Dans un tube (1) à fond rond centrifugeable, on place 5 ml d'un milieu de séparation de basophiles dont la composition est la suivante Hépès, solution molaire 0,369 ml KCl 10 % 0,049 ml NaCl 9 % 4,63 ml Héparinate de sodium 263 unités (1,65 mg) Polyvinylpyrrolidone 2 g Ioxaglate de sodium et de méglumine (diffusé sous la 23,7 ml marque "HEXABRIX" des Laboratoires GUERBET) H2O qsp 95 ml + 5 ml environ pour ajuster la densité à 1,080 g/ml pH 7,42 à 370C 3e- On dépose doucement dans ce tube (1) à la surface du milieu de séparation, à l'aide d'une pipette Pasteur,le mélange volume à volume d'échantillon de sang et de tampon Hépès contenant de l'héparine,préparé en ci-dessus. 4- On centrifuge ce tube pendant 30 minutes, à 400 g. Le tampon Hépès contenant le KC1 et le NaCl se sépare du milieu de séparation proprement dit constitué par le mélange de 1'"HEXABRIX" et de polyvinylpyrrolidone dans un tampon Hépès,et à la limite entre les deux, il se forme un anneau blanchâtre que l'on prélève en totalité (1 à 3 ml) à l'aide d'une pipette Pasteur montée sur seringue ou poire. 5g- Le milieu cellulaire ainsi obtenu est déposé dans un tube (2) à centrifuger contenant du milieu tampon Hépès hépariné présentant la composition suivante Hépès, solution molaire 4 à 25 ml KCl 10 % 0,932 ml NaCl 9 % 85 à 90 ml Héparinate de sodium 5000 à 10000 unités Eau qsp 1000 ml pH 7,4-7,6 à 37eC à l'aide duquel il est lavé au cours d'une centrifugation de 10 minutes à 150 g. Le surnageant est prélevé jusqu'à la rupture de pente du tube (volume restant 4 0,5 ml), ou bien on peut, en variante, de façon tout aussi efficace, éliminer le surnageant en retournant le tube 3 secondes et reprendre le culot cellulaire par environ 0,5 ml du même tampon Hépès. Dans les deux cas, le culot cellulaire est homogénéisé totalement pendant 30-50 secondes par agitation manuelle ou au VORTEX (Marque déposée). II - Test de diagnostic 1-- Le culot cellulaire mis en suspension est déposé par fractions de 20 pl dans chacun des puits d'une lame de lecture de diagnostic, qui peuvent éventuellement contenir du CaCl2 et du MgCl2.La lame est ensuite mise dans une boîte couverte (type boîte de Pétri) contenant un morceau de coton humide. L'ensemble est placé à l'étuve à 37eC pendant 20 minutes. Puis le couvercle de la boîte et le coton sont enlevés. La lame, toujours à l'étuve, est ainsi séchée en environ 15 à 30 minutes. On peut aussi sécher les lames au sèche-cheveux. La fixation/coloration est obtenue en recouvrant chacun des puits d'une solution de coloration et de fixation rapides, simultanées, décrite dans l'Art antérieur. La lame est ainsi laisse sur la paillasse pendant 15 minutes, puis est rincée dans un bain d'eau (30 secondes ), déshydratée dans un bain d'éthanol absolu (20 à 30 secondes) et plongée quelques secondes dans un bain de xylène pour faciliter le montage. Une goutte de milieu de montage est déposée sur une lamelle. Celle-ci est ensuite appliquée sur la lame. 10 à 15 minutes sont nécessaires pour sécher l'ensemble (on peut accélérer le séchage en mettant la lame à l'étuve ou sous un sèche-cheveux). 2*- Lecture du test Elle est réalisée au microscope optique ordinaire. Il est préférable de disposer d'objectifs et d'oculaires "grand-champ" et de qualité suffisante pour procurer une mise au point parfaite sur l'ensemble du champ. Elle peut avantageusement être pratiquée à l'aide d'une caméra de télévision montée sur le microscope et reliée à un "ordinateur" type "OPTOMAX" (Marque déposée) en noir et blanc. Cette technique de lecture du test est décrite dans "ALLERGY", 1981, 36, 239-244, F. LEYNADIER, H. LUCE, A. ABREGO et J. DRY "Automated Measurement of human basophil degranulation". Le grandissement utilisé est variable avec le nombre de basophiles. En général de 400, il peut être porté à 1000 (immersion) en cas de grande richesse en basophiles, ou au contraire à 250 si l'observateur est habitué. Les basophiles sont reconnus grâce à leur coloration foncée par rapport aux autres cellules (essentiellement lymphocytes et monocytes) et surtout à la teinte violette parfois rouge différente de la coloration bleue (claire ou foncée) des autres cellules. Les basophiles sont comptés sur chacun des puits. Dans la grande majorité des cas, vingt champs microscopiques sont suffisants (dix champs au hasard dans un diamètre vertical et dix champs au hasard dans un diamètre horizontal). L'important est, bien entendu, qu'un même nombre de champs soit examiné sur chacun des puits. En ajoutant les nombres de basophiles trouvés dans les puits identiques A etB, on obtient T = nombre de basophiles sans antigène ou nombre total de basophiles Ag (1,2, 3 ou 4) = nombre de basophiles avec antigène(s) à la dilution 1,2,3 ou 4 On détermine l'index de dégranulation (I.D.) pour chaque dilution d'antigène(s) par la relation suivante I.D. % = T Ag x 100 T c'est-à-dire le nombre de basophiles ayant dégranulé à une dilution donnée par rapport au nombre total de basophiles présents dans le témoin T (cette valeur étant exprimée en pourcentage). Le Tableau ci-dessous montre que le pourcentage de dégranulation est sensiblement du même ordre lorsqu'il est pratiqué avec du réactif constitué par des basophiles isolés de sujets allergiques en utilisant le procédé de préparation du réactif qui fait l'objet de la Première Addition, et avec du réactif obtenu par le procédé qui fait l'objet de la présente Addition. TABLEAU EMI11.1 <tb> <SEP> Test, <SEP> exprimé <SEP> en <SEP> t <SEP> de <SEP> dégranulation, <SEP> <tb> <SEP> effectué <SEP> avec <SEP> du <SEP> réactif <SEP> constitué <SEP> par <SEP> <tb> <SEP> des <SEP> bas*iles <SEP> isolés <SEP> à <SEP> l'aide <SEP> du <tb> <SEP> milieu <SEP> de <SEP> sépara <SEP> milieu <SEP> de <SEP> sépara- <SEP> <tb> Nom <SEP> du <SEP> malade <SEP> Date <SEP> tion <SEP> selon <SEP> <SEP> la <SEP> tion <SEP> selon <SEP> la <tb> 1ère <SEP> Addition <SEP> présente <SEP> Addition, <tb> <SEP> contenant <SEP> 2 <SEP> % <SEP> de <tb> <SEP> pvp <SEP> <tb> <SEP> T <SEP> % <SEP> <SEP> T <tb> PL. <SEP> 3/12/81 <SEP> 50 <SEP> 0 <tb> Gwenolla <SEP> L. <SEP> 3/12/81 <SEP> 146 <tb> Francis <SEP> C. <SEP> 3/12/81 <SEP> 125 <SEP> 88 <tb> Nicole <SEP> P. <SEP> 3/12/81 <SEP> 129 <SEP> 0 <tb> J.Ph. <SEP> S. <SEP> 7/12/81 <SEP> 150 <SEP> 0 <SEP> <tb> Jean <SEP> G. <SEP> 7/12/81 <SEP> 129 <SEP> 98 <tb> Martine <SEP> M. <SEP> 7/12/81 <SEP> 106 <SEP> O <SEP> <tb> Gilles <SEP> G. <SEP> 9/12/81 <SEP> 158 <SEP> 93 <tb> Eliane <SEP> G. <SEP> 10/12/81 <SEP> 148 <SEP> 42 <SEP> 116 <SEP> 64 <tb> Madeleine <SEP> L. <SEP> 10/12/81 <SEP> 116 <SEP> 72 <tb> Christian <SEP> P. <SEP> 10/12/81 <SEP> 84 <SEP> 0 <SEP> 151 <SEP> 9 <tb> Yvonne <SEP> B. <SEP> 10/12/81 <SEP> 80 <SEP> 0 <tb> Ibrahima <SEP> D. <SEP> 29/12/81 <SEP> 93 <SEP> 32 <tb> Emile <SEP> S. <SEP> 5/01/82 <SEP> 158 <SEP> 0 <SEP> 141 <SEP> 0 <tb> Claude <SEP> B. <SEP> 5/01/82 <SEP> 139 <SEP> 92 <SEP> 137 <SEP> 89 <tb> Michel <SEP> O. <SEP> 5/01/82 <SEP> 153 <SEP> 41 <SEP> 154 <SEP> 36 <tb> Pascal <SEP> B. <SEP> 7/01/82 <SEP> 118 <SEP> 0 <SEP> 132 <SEP> 0 <tb> liev. <SEP> 25/01/82 <SEP> 115 <SEP> 154 <tb> Dupont <SEP> 25/01/82 <SEP> 175 <SEP> 115 <tb> Gesl. <SEP> 25/01/82 <SEP> 100 <SEP> 154 <tb> Palv. <SEP> 25/01/82 <SEP> 67 <SEP> 111 <tb> Ren. <SEP> 27/01/82 <SEP> 93 <SEP> 100 <tb> T = Nombre de basophiles comptés sur 10 champs microscopi ques en l'absence d'antigène (témoin). Le réactif de diagnostic conforme aux dispositions de la présente invention est utilisable non seulement pour la réalisation de tests de diagnostic ou de dépistage de parasitoses et d'allergies, mais également au diagnostic d'autres maladies et notamment d'affections bactériennes, immunopathologiques, virales et mycologiques, en particulier, qui provoquent une augmentation des immunoglobulines spécifiques circulantes, et notamment des IgE. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, 1 'in- vention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en embrasse, au contraire, toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée, de la présente invention.

Claims: REVENDICATIONS 1 - Procédé de préparation du réactif de diagnostic des parasitoses et des allergies qui provoquent une augmentation des immunoglobulines circulantes, caractérisé en ce qu'au cours d'une première étape,un échantillon de sang total, prélevé de préférence en milieu d'acide éthylènediaminetétraacétique à l'état libre ou sous forme de l'un de ses sels, chez un patient humain ou animal supposé atteint d'une ou de plusieurs parasitoses ou d'une ou de plusieurs allergies, mélangé sensiblement volume à volume avec un tampon Hépès, est déposé sur un milieu de séparation des basophiles qui contient principalement du tampon Hépès, de la polyvinylpyrrolidone et un sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1,0771,085, puis en ce qu'au cours d'une deuxième étape, cette composition est centrifugée pendant une durée et à une vitesse appropriées, pour obtenir un anneau contenant les basophiles et les lymphocytes, lequel est prélevé et lavé soigneusement avec du tampon Hépès de composition appropriée qui est ensuite rejeté pour ne conserver que le culot cellulaire qui, après remise en suspension, est prêt à être déposé dans les puits d'une lame ou d'une boîte de lecture de diagnostic dans certains desquels a été préalablement introduit du tampon et dans certains autres desquels ont été préalablement introduits des dilutions d'allergène(s) ou d'antigène(s) parasitaire(s). 2e Procédé selon la Revendication 1,caractéri sé en ce que le milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre au cours de la première étape du procédé contient de préférence de l'héparine, de préférence sous la forme de l'un de ses sels alcalins, et plus particulièrement de son sel de sodium. 3"- Procédé selon la Revendication 1, caractérisé en ce que le sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble que contient le milieu de séparation susdit, est avantageusement pris dans le groupe qui comprend des sels d'acides triiodo- ou hexaiodobenzéniques hydrosolubles et plus particulièrement l'îoxitalamate de sodium et/ou de méglumine, l'ioxitalamate de méglumine et de monoéthanolamine, l'ioxaglate de sodium et/ou de méglumine. 4g- Procédé selon la Revendication 1, caractérisé en ce que ledit milieu de séparation des basophiles est constitué par une solution contenant principalement de 3,5 à 5,5 ml/litre de tampon Hépès, de 5 à 30 g/litre de polyvinylpyrrolidone, de 220 à 250 ml/litre de sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble. 5-- Procédé selon la Revendication 1, caractérisé en ce que ledit milieu de séparation des basophiles présente avantageusement la composition suivante : Hépès, solution molaire 3,5 à 5,5 ml KC1 10 % 0,49 ml NaCl 9 % 45-48 ml Héparine sous la forme de l'un de ses sels alcalins 2500-7500 unités Polyvinylpyrrolidone 5-30 g Sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble 220-250 ml Eau qsp 7 litre Densité 1,079-1,085 pH 7,35-7,50 à 37"C. 6-- Réactif de diagnostic d'affections qui provoquent une augmentation des immunoglobulines spécifiques circulantes, et notamment des IgE, caractérisé en ce qu'il est constitué par une suspension de globules blancs porteurs d'IgE spécifiques, obtenue à partir d'un échantillon de sang prélevé chez un patient humain ou animal devant être soumis à un test de diagnostic, laquelle suspens ion est enrichie en lesdits globules blancs porteurs d'IgE spécifiques (basophiles) et est obtenue par centrifugation d'une composition constituée par un mélange sensiblement volume à volume dudit échantillon de sang et d'un tampon Hépès de préférence hépariné, déposé sur un milieu de séparation desdits globules blancs, comprenant essentiellement du tampon Hépès, de la polyvinylpyrrolidone et un sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1,077-1,085, le culot cellulaire résultant de ladite centrifugation étant constitu par la- suspension de globules blancs porteurs d'IgE spécifiques (basophiles) qui forme le réactif de diagnostic. 7- Milieu de séparation pour la préparation du réactif de diagnostic selon la Revendication 5 ci-dessus, caractérisé en ce qu'il contient principalement du tampon Hépès, de la polyvinylpyrrolidone et un sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1,077-1,085. 8- Milieu de séparation selon la Revendication 7 ci-dessus, caractérisé en ce qu'il est. constitué par une solution contenant principalement de 3,5 à 5,5 ml/litre de tampon Hépès, de 5 à 30 g/litre de polyvinylpyrrolidone, de 220 à 250 ml/litre d'un ou plusieurs sels d'acides iodobenzéniques hydrosolubles. 9*- Milieu de séparation selon la Revendication 8 ci-dessus, caractérisé en ce qu'il présente avantageusement la composition suivante Hépès, solution molaire 3,5 à 5,5 ml KC1 10 % 0,49 ml NaCl 9 % 45-48 ml Héparine sous la forme de l'un de ses sels alcalins 2500-7500 unités Polyvinylpyrrolidone 5-30 g Sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble 220-250 ml Eau qsp 1 litre Densité 1,079-1,085 pH 7,35-7,50 à 37"C 10- Kits prêts à l'emploi pour la réalisation du test de diagnostic des parasitoses et des allergies caractérisés en ce qu'ils comprennent - un ensemble de composant s pour la séparation des cellules basophiles, constitués par une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédosée du milieu de séparation des basophiles selon la Revendication 5 cidessus, et une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédosée de tampon Hépès selon la Revendication 10 de la première Addition, pour le lavage de l'anneau lymphocytaire séparé par le milieu de séparation ; - et un ensemble de composants pour la réalisation du test de diagnostic, constitués par une pluralité de lames ou de botes de lecture de diagnostic, présentant chacune un certain nombre de puits dont la majeure partie, à l'exception des puits témoins, sont destinés à recevoir des quantités prédéterminées variables d'un ou plusieurs antigènes spécifiques d'une ou plusieurs allergies ou d'une ou plusieurs parasitoses à diagnostiquer ou à dépister, - une pluralité d'ampoules ou de tubes renfermant des quantités prédosées d'une solution de fixation et de coloration rapides, simultanées, - un tube de milieu de montage optique, - et une pluralité de lamelles de protection. 1 Application du réactif de diagnostic selon la Revendication 5 ci-dessus au diagnostic d'une parasitose ou d'une allergie, au diagnostic simultané de plusieurs parasitoses et/ou allergies et au diagnostic d'autres affections qui provoquent une augmentation des immunoglobulines spécifiques circulantes et notamment des IgE, telles que les affections bactériennes, immunopathologiques, virales et mycologiques, en particulier.

Inventors: LEYNADIER, FRANCISQUE
Applicants: INSTITUT PASTEUR
Application year: 1983
Main classification: G01N33
IPC codes: G01N33, A61K39