VACCINE AGAINST VIRAL HEPATITIS B, METHOD AND TRANSFORMED EUCARYOTIC CELLS FOR THE PREPARATION OF THIS VACCINE

Abstract: 1. A process for producing a culture of competent eucaryotic cells capable of expressing a viral DNA and selected from those which are responsible for a hepatitis, wherein the competence of the eucaryotic cells which are capable of being used can be appreciated by the capacity which can be imparted thereto, after transformation thereof with a vector containing a tandem sequence comprising two DNA HBV, to secrete an immunogenic protein capable of inducing in vivo the production of active antibodies against the entire virus of viral hepatitis B, characterised by the operation which consists of transforming said culture of eucaryotic cells with a vector, more particularly a plasmid which itself contains an insertion sequence which itself comprises at least the part of the viral DNA which codes for an immunogenic protein capable of inducing in vivo the production of active antibodies with regard to the entire virus, and the promoter of said virus, under the control of which are effected transcription and translation in the normal host infected by said virus of said part of viral DNA.

Description: PROCEDE DE TRANSFORMATION DE CELLULES, NOTAMMENT EUCA RYOTES, PAR UN ADN ORIGINAIRE DES VIRUS DE L'HEPATITE, PLUS PARTICULIEREMENT DU VIRUS DE L'HEPATITE VIRALE B, ET PREPARATIONS CONTENANT LES PRODUITS D'EXPRESSION DES DITS ADN. L'invention est relative à une préparation contenant des antigènes possédant des propriétés immunologiques, notamment antigéniques, caractéristiques des virus de diverses formes d'hépatites, telles que l'hépatite virale B ou diverses autres formes d'hépatites telles que celles qui sont connues pour se développer chez certains sujets à la suite de transfusions sanguines, par exemple les hépatites dites "non A" ou "non B". L'invention concerne plus particulièrement des préparations de ce type, qui sont caractérisées par unepureté élevée, l'absence de protéines d'origine humaine et, lorsqu'il s'agit d? préparations ayant des propriétés antigéniques analogues à celles des antigènes HBs, exemptes de particules de Dane. Elle est également relative àun procédé de production de ces antigènes. On sait que certaines des propriétés antigéniques spécifiques du virus de l'hépatite doivent être attribuées à un antigène appelé Antigène HBs" ou "HBsAg", essentiellement formé par l'enveloppe du virus de l'hépatite virale du type B (HBV) ou particule de Dane. Cet antigène, qui possède des propriétés vaccinantes à l'égard de l'hépatite virale du type B est, à l'heure actuelle, essentiellement obtenu à partir d'échantillons de sérum humain. Cependant on ne dispose pas à ce jour d'autres sources d'approvisionnement en HBsAg, en raison des caractéristiques particu lières du virus de l'hépatite B (HBV). I1 semble n'être capable d'infecter que l'homme, le chimpanzé et, peut être, un nombre réduit d'autres primates. I1 n'a pas été possible jusqu'à ce jour de le propager in vitro dans des cultures de cellules. On connaRt-certes des lignées d'hépatocarcinomes qui synthétisent de l'HBsAg. L'utilisation chez lthomme de cellules cancéreuses pour la production de particules à caractère vaccinant se heurte à des objections bien compréhensibles. L'utilisation en thérapeutique préventive des antigènes HBs d'origine humaine n'est cependant pas dépourvue de risques sérieux. En effet, ils proviennent en général de personnes qui ont été exposées au virus de l'hépatite virale B, de sorte que la présence de particules de Dane, quelquefois encore hautement infectieuses, dans les préparations d'antigène d'HBsAg d'origine sérique ne peut pas toujours être complètement exclue, même dans le cas de préparations extrêmement purifiées. Les teneurs des préparations même hautement purifiées d'antigène HBsAg de l'état de la technique en protéines sériques ou autres composants éventuellement antigéniques, susceptibles dtinduire chez les sujets traités des réactions immunitaires néfastes, ne sont pas négligeables, en raison de leur teneur initiale très faible en HBsAg vis-à-vis des protéines du sérum initial (par exemple de l'ordre de 50 vg d'HBsAg vis-à-vis de 80 mg de protéine dans 1 ml de sérum). Malgré les difficultés rencontrées pour disposer de quantités suffisantes de virus, il a quand même été établi que le génome du virus de l'hépatite B est formé d'une molécule d'ADN circulaire partiellement à simple brin, dont le brin le plus long comporte de l'ordre de 3200 nucléotides (SUMMERS J. et coll. (1975) Proc. Nat. Sci. U.S.A. 72, 4597-460). Au surplus, il a été possible de localiser le gène codant la partie de la protéine de l'antigène HBsAg, qui¯esk responsable des propriétés immunologiques de l'enveloppe du virus de l'hépatite B. La position de ce gène, dénommé "gène S" résulte notamment de la carte schématique du génome de la particule de-Dane, qui est donnée dans la figure 1 des dessins. La figure 1 comprend une carte schématique de 1'ADN du génome de la particule de Dane, Cet ADN comporte deux brins b1 et b2, le plus court d'entre eux (b2) étant normalement dépourvu de la partie représentée par une ligne en trait interrompu dans le dessin. Il est connu que cet ADN ne comporte qu'un seul site EcoRI. La flèche f1 donne le sens de la numérotation des nucléotides, dont est composé le brin le plus long b1, et la flèche f2 donne le sens de la trans cription du gène S par la machinerie cellulaire des cellules envahies par le virus de l'hépatite B. Le site EcoRI peut donc être numéroté 0, ou 3182 (dans le cas des virus de l'hépatite B appartenant au sérotype 3182) (NATURE, 1979, vol. 281, p. 646-650). Le cercle concentrique intérieur e1 donne l'échelle en nombres de nucléotides. Ce cercle permet de préciser les positions de certaines des parties de cet ADN. Les nombres 3', 5' et 5', 3' à la partie inférieure de la carte visent les extrémités terminales porteuses de mêmes nombres dans les représentations conventionnelles des extrémités des chaines d'acide nucléique. Au surplus, le gène codant pour la partie de la protéine de l'antigène HBsAg a été localisé. La position de ce gène, dénommé "gène S", est schématisée par la flèche S sur la figure. Le "gène S" est essentiellement porté par le fragment du brin le plus long b1 situé entre les positions nucléotidiques 155 et 833 de la carte schématique de la figure dans le sens de la transcription du gène S. Le brin le plus court (b2) du génome de la particule de Dane peut être "réparé in vitro en présence de nucléotides précurseurs et d'une polymérase, par exemple selon la technique de T.A. LANDERS et coll., J. VIROL., 23, 1977, p. 368-376. Les génomes ainsi réparés des virus de l'hépatite virale (ou tout ADN susceptible de coder pour les mêmes séquences d'acides aminés) seront ci-après,désignés par l'abréviation DNA HBV. L'invention a donc pour but de fournir des pro cédés tels qu'ils ont été spécifiés plus haut, qui soient applicables d'une façon générale à l'étude et à l'expression dans des cellules eucaryotes de tout ou partie de génomes entiers des virus responsables des différentes hépatites virales, plus particulièrement de DNA HBV. Elle a également pour but la production de vecteurs modifiés permettant la mise en oeuvre de ces procédés. L'invention a enfin plus particulièrement pour but la production de préparations contenant des antigènes présentant la même spécificité immunologique que 1'HBsAg ou d'un antigène analogue de haute pureté, comme il a été indiqué plus haut, à partir d'un système autre que le sérum humain, système qui est à la fois reproductible et stable (ou présentant un certain nombre de caractères déterminés qui peuvent faire l'objet d'une surveillance permanente). Le procédé selon l'invention pour déterminer la possibilité éventuelle de transformation d'une culture de cellules déterminées par un ADN normalement circulaire ou un génome entier du virus correspondant, comprend l'opération qui consiste à transformer cette culture de cellules avec un vecteur, plus particulièrement un plasmide, contenant lui-même une séquence d'insertion comportant elle-même au moins la partie de 1'ADN viral codant pour la protéine immunogène, capable d'induire in vivo la production d'anticorps actifs à l'égard du virus entier, ainsi que le promoteur viral sous le contre duquel s'effectuent normalement la transcription et la traduction de la susdite partie d'ADN viral, en particulier chez un hôte infecté par le virus correspondant. Conformément à un premier mode de réalisation de l'invention, la susdite séquence d'insertion est formée d'au moins deux de ces ADN, notamment deux DNA HBV, orientés dans la même direction de transcription et dans laquelle la queue de l'un est reliée à la tête de l'autre. Dans ce qui suit, on utilisera souvent, pour la commodité du langage, l'expression "séquence tandem't, pour désigner des séquences d'insertion compre nant deux ADN du genre en question, sauf lorsque spécifié autrernent. Dans un mode de mise en oeuvre préféré du procédé selon l'invention, la susdite séquence d'insertion est formée d'au moins deux de ces DNA HBV ou de deux fragments de DNA HBV, normalement contenus dans DNA HBV de part et d'autre de son site EcoRI, orientés dans la même direction de transcription, l'un de ces fragments de DNA HBV contenant la séquence de nucléotides du gène S,qui est apte à coder pour le polypeptide responsable des propriétés immunologiques de l'antigène HBs et l'autre desdits fragments étant suffisamment long pour qu'il soit susceptible d'inclure le promoteur du gène S. Conformément à un premier mode de mise en oeuvre préféré du procédé selon l'invention, les ADN orientés de la séquence d'insertion sont constitués par des fragments de DNA HBV, la queue de l'un de ces fragments étant reliée à la tête de l'autre fragment au niveau d'un site EcoRI. Il va de soi que certaines parties non essentielles de ces dernières séquences d'insertion peuvent être délétées. Une telle séquence d'insertion contient donc avantageusement, d'une part,le fragment de DNA HBV qui contient la séquence de nucléotide du gène S codant pour le polypeptide responsable des propriétés immunologiques de l'antigène HBs et, d'autre part, un fragment de DNA HBV étant suffisamment long pour qu'il soit susceptible d'inclure le promoteur du gène S, en amont du précédent dans le sens de la transcription, ces deux fragments étant normalement situés de part et d'autre du site EcoRI de DNA HBV. En d'autres termes, cette séquence d'insertion comprend notamment, si l'on se réfère à la figure 1, d'une part, le sous-fragment compris entre les positions nucléotidiques 833 à O (sens inverse de f1 ), lorsque ce sous-fragment comprend le gène S dans son entier et, d'autre part, un sous-fragment compris entre la position 3182 et une position correspondant à un nombre suffisam ment éloigné de cette position 0, dans le sens inverse de la transcription, pour que le promoteur susdit soit susceptible d'y être inclus. Il s'avère que le dernier sous-fragment devra normalement comprendre une séquence TATATAA, laquelle se trouve normalement en amont du début du gène S, à une distance correspondant à un nombre de nucléotides de l'ordre de 235. Plus particulièrement encore, la séquence d'insertion comprendra une partie supplémentaire du DNA HBV se situant en amont du site BglII, lui-même au niveau du nucléotide 2840. Conformément à une caractéristique supplémentaire de l'invention, la séquence d'insertion comprend également en outre un sous-fragment en aval du gène S dans le sens de la transcription, ce fragment s'étendant normalement dans le sens de la transcription au-delà du site BamHI de DNA HBV. Une séquence d'insertion préférée comprend la totalité du gène codant pour l'ARN messager correspondant à l'antigène HBs. La position relative de cet ARN messager est représentée dans la figure 1 par la flèche ARN, dont le début coïncide sensiblement avec la position du nucléotide 2800, si l'on se réfère à la carte de la figure 1, et qui se termine entre les sites BamH1 et BGlII 1986. Une séquence d'insertion préférée susceptible. d'être mise en oeuvre dans le procédé selon l'invention est donc caractérisée en ce qu'elle comporte à la fois le gène S et le gène codant pour 1'ARN messager correspondant à l'antigène HBs. Comme il résultera de la suite de cette description, cette séquence est de préférence dépourvue de toute partie du gène codant pour l'antigène HBc, suffi sant à s'exprimer sous forme d'une protéine ayant les propriétés immunogènes de l'antigène HBc. Dans la suite de cette description, il sera fait référence plus particulièrement à DNA HBV. Il est néanmoins entendu que toutes les techniques qui sont décrites sont également applicables aux ADN ou génomes entiers correspondants des autres virus, responsables des autres types d'hépatites. De préférence, on se place dans des conditions qui permettent en même temps un marquage des cellules transformées, de façon à rendre leur détection aisée, par exemple en mettant en oeuvre des cellules ou mutants de ces cellules rendues déficientes, à des fins de sélection (déficience naturelle ou induite), en un gène marqueur sélectionnable normalement nécessaire à leur croissance, lorsqu'elles sont placées dans certains milieux de culture déterminées, ces cellules étant néanmoins susceptibles de se développer à nouveau dans l'un au moins de ces mêmes milieux de culture, après introduction dans ces cellules d'un gène ou fragment d'ADN homologue, quoique d'origine étrangère (ADN de complémentation), susceptible de compenser ou "complémenter" ladite déficience, le procédé consistant alors, soit à tenter de réaliser la transformation desdites cellules - soit avec un seul vecteur contentant, d'une part, la sé quence d'insertion étudiée, notamment dérivée de DNA HBV, et, d'autre part, un tel "ADN de complémentation", res pectivement inséré dans son propre génome, - soit avec deux vecteurs (co-transformation ou transforma tions simultanées), - l'un de ces vecteurs, de préférence un plasmide, ayant préalablement été modifié par l'insertion dans son gé nome d'un tel ADN de complémentation ; - l'autre vecteur, de préférence un plasmide aussi, ayant préalablement été modifié par l'insertion dans son gé nome de la susdite séquence d'insertion, - et à recueillir, après leur culture dans le milieu sus défini les colonies qui se sont développées et qui ont été transformées par la séquence d'insertion. Dans la mesure où le DNA HBV est susceptible d'être exprimé dans la cellule de ladite culture, la séquence tandem (ou contenant plus de deux unités de DNA HBV), ou d'une façon plus générale la séquence d'insertion telle qu'elle a été définie plus haut, doit normalement se comporter comme le ferait l'ADN circulaire correspondant ainsi introduit dans la cellule, en l'absence de tout vecteur. L'utilisation d'un tel vecteur, notamment plasmide, en lieu et place de l'ADN circulaire lui-même est d'un très grand intérêt en ce que l'on peut disposer de quantités importantes d'un tel vecteur après amplification par clonage dans une bactérie du vecteur préalablement construit in vitro. Le procédé selon l'invention permet donc de tester la capacité d'un ADN circulaire ou d'un génome entier de virus - en particulier des ADN des virus d'hépatites autres que DNA HBV - à s'exprimer dans des cellules eucaryotes, sans qu'il soit nécessaire de se préoccuper de la position exacte du promoteur sous le contre duquel est placée la transcription. Les vecteurs modifiés par les susdites séquences d'insertion, notamment celles dérivées de DNA HBV peuvent être utilisées pour induire l'expression de ces séquences d'insertion dans des cultures de cellules eucaryotes, notamment de souris ou d'origine humaine. Lorsqu'on utilise, pour le marquage des cellules transformées, un vecteur distinct, notamment un plasmide contenant le marqueur, on a de préférence recours à un plasmide contenant un "ADN de complémentation", tel que le gène de. la thymidine-kinase du virus Herpès simplex HSV-1, lequel peut être excisé du génome du virus par des enzyme de restriction spécifiques, tels que BamHI. A ùe gène de la thymidine-kinase d'origine virale correspondent, dans de nombreux types de cellules eucaryotes, des gènes homologues propres à diriger la synthèse de la thymidine-kinase (enzyme phosphorylant la thymidine exogène fournie par le milieu de culture). La possibilité de suppléer à certaines déficiences génétiques de cellules eucaryotes, notamment de souris, par exemple à celles affectant leur gène de la thymidine-kinase endogène, en raison d'une mutation induite ou provoquée, a déjà été décrite par M. WIGLER et coll. (Cell. vol. II, 223-232, 1977). Les cellules défi clientes, dites TK , sont.sélectionnées en raison de leur incapacité de synthétiser la thymidine-kinase dans un milieu tel que celui connu sous le nom de "milieu HAT" (contenant de l'hypoxanthine et de l'aminoptérine en sus de la thymidine). Ce milieu est connu pour n' autoriser l'éventuelle synthèse de thymidine phosphate que par l'intermédiaire d'une voie métabolique dite "voie de sauvetage" (salvation pathway), cette voie impliquant cependant que soit préservée l'intégrité du gène TK des cellules susceptibles de s'y développer. Des cellules TK deviennent néanmoins capables de se développer dans ce même milieu dès lors qu'elles ont été modifiées par incorportation du gène TK du virus de l'herpès au patrimoine génétique transmissible par ces cellules à leur descendance, comme suite à leurs divisions cellulaires successives. De 11TK" qu'elles étaient antérieurement, avant la susdite incorporation, ces cellules sont alors devenues "TK+" du fait de la restauration alors constatée de leur capacité de phosphoryler la thymidine dans le susdit milieu et par conséquent de s'y développer. Bien entendu le fragment d'ADN contenant le gène de la thymidine-kinase peut être remplacé par tout autre ADN de complémentation approprié. A titre d'exemple, d'autres gènes de complémentation qui peuvent être utilisés pour la constitution des vecteurs selon l'invention, on citera celui contenant celui de la dihydrofolate réductase (DHFR), ou d'une façon générale, tout gène de complémentation dont de nombreux exemples existent dans la nature. L'ADN de complémentation peut naturellement comporter un gène naturel. Il peut aussi'être synthétisé, notamment de façon enzymatique, par copie d'un ARN messager correspondant. En ce qui concerne la technique de co-transformation elle-même, il est avantageux d'utiliser le vecteur dans lequel est inséré le gène de complémentation et le vecteur dans lequel est inséré le fragment dérivé de DNA HBV dans un rapport élevé supérieur à 100, par exemple de l'ordre de 1000. Plus ce rapport est élevé, plus le nombre de cellules co-transformées par les deux vecteurs à la. fois est grand. il est avantageux d'avoir recours aux mêmes vecteurs de base pour former les deux types de vecteurs modifiés utilisés pour la co-transformation. Un vecteur de base particulièrement favorable est constitué par le plasmide pBR 322. On pourra en particulier insérer un "DNA H3sr tandem dans son site EcoRI pour former l'un des vecteurs modifiés de co-transformation (pCP10). Par l'insertion d T un gène tkKSV, soit dans un site PvuII, soit dans un site Bam HI du même plasmide PBR 322, on peut obtenir le second vecteur de co-transformation (pAGO). En ce qui concerne les conditions de culture, il 'va naturellement de soi que le milieu préalablement utilisé pour atteindre à un développement suffisant des cultures, doit être remplacé au moment de la transformation ou peu après celle-ci par un milieu '(tel que le milieu HAT dans le cas où 1'ADN de complémentation choisi est un gène de thymidine-kinase) dans lequel les cellules non complémentées sont incapables de se développer. La réalisation desdites co-transformations, particulièrement lorsque l'on met en jeu des plasmides modifiés préférés susdits dans des fibroblastes de souris, conduit au résultat remarquable que constitue l'ex- crétion par les cellules co-transformées dans le milieu de culture de particules présentant des propriétés 'immunologiques caractéristiques des enveloppes du virus de l'hépatite B, notamment en ce qui concerne leur agglutination par des anticorps susceptibles d'agglutiner les antigènes HBsAg naturels, tels qu'isolés des sérums humains. La présence de particules excrétées agglutinables par des anticorps anti- HBsAg peut être détectée par des essais radio-immunologiques classiques, par exemple par immunofluorescence indirecte mettant en jeu des sérums anti-HBsAg et des anti-IgG fluorescents de lapin. Les quantités formées peuvent être dosées par des tests d'hémagglutination passive directe, de façon en soi connue pour les HBsAg naturels. Il est également remarquable que les particules excrétées, notamment dans des cultures de cellules de souris, ne contiennent pas de traces détectables d'antigènes HBcAg et HBeAg, détectables par immunofluorescence directe mettant en jeu des anticorps humains fluorescents anti-HBc et anti-HBe/1,2,3. Par mise en contact des cellules co-transformées elles-mêmes avec un sérum anti HBsAg des granules cytoplasmiques individualisées sont révélées par immunofluorescence indirecte dans la majeure partie des cellules co-transformées. Ces particules peuvent être également repérées après lyse des cellules. Dans la plupart des cas les particules excrétées forment la majeure partie des particules agglutinables par des anticorps anti-HBsAg susceptibles d'être produites. Les particules formées, qu'elles soient excrétées dans le milieu ou retenues dans le cytoplasme des cellules co-transformées, présentent encore les proprié- tés qui seront encore mentionnées plus loin dans la description d'exemples. Il s'est avéré cependant que la transformation de cellules humaines HeLa avec un ADN cloné circularisé d'un virus de I'hépatite B a conduit à l'excrétion par ces cellules non seulement d'antigène HBs, mais également de particules virales complètes contenant de l'antigène HBc dans le milieu de culture (9). Aussi est-il avantageux, conformément à un perfectionnement supplémentaire de l'invention, d'avoir recours à une séquence d'insertion telle qu'elle a été définie plus haut, dérivée de DNA HBV, dont on a au préalable excisé certaines parties extérieures au gène S du DNA HBV, de façon à n'utiliser que des génomes défectifs qui ne sont plus capables de coder des particules de Dane entières. En particulier, on aura avantageusement recours à une séquence d'insertion dont a été délétée une partie suffisante du gène codant pour l'antigène HBc, pour que la production de ces derniers antigènes par les cellules infectées soit rendue impossible. Ces séquences d'insertion peuvent par conséquent être utilisées pour modifier des vecteurs qui seront alors aptes à transformer des cellules eucaryotes, qu'il s'vagisse de fibroblastes de souris ou de cellules humaines, mais en l'absence de toute possibilité de production d'antigène HBc. En particulier, l'ADN d'insertion est avantageusement constitué par l'ADN du virus de l'hépatite virale B, dont a été délété le fragment délimité par les extrémités BglII au niveau des nucléotides 1986 et 2425, si l'on se réfère à la carte schématique de la figure I à l'intérieur du gène C, dont la position relative vis-à-vis de l'ADN entier a été symbolisée par la flèche C. On peut également avoir recours à des séquences d'insertion originaires du DNA HBV, dont auront été dé tétés des fragments plus importants, notamment telles que déjà définies ci-dessus. Bien entendu, cet ADN d'insertion peut comprendre des délétions supplémentaires, ppur autant que cellesci n'affectent ni la capacité d'expression de la séquence d'insertion, ni les phases de sa traduction. De meme, l'invention s'étend à l'usage de toute séquence d'insertion équivalente, qu'il s' agisse de la séquence correspondante d'un ADN viral appartenant à un autre sous-type que celui qui a été envisagé dans le présent texte et repris dans les exemples, ou d'une séquence dont certaines parties auraient été modifiées sans que soit pour autant altérée la capacité des produits d'expression de réagir immunologiquement avec des anticorps contre des antigènes HBs. Il a ainsi été possible d'obtenir, à partir de cultures de cellules de fibroblastes de souris trans for- mées avec des vecteurs modifiés par des séquences d'insertion, telles que définies ci-dessus, des préparations d'antigènes présentant les caractéristiques immunologi ques de l'antigène HBsAg, dépourvues (dans les limites des méthodes de détection disponibles) de toute particule de Dane et des autres antigènes caractéristiques contenus dans ces dernières, en l'absence de composants d'origine humaine, notamment de toute protéine sérique. En outre, il a été vérifié que les protéines excrétées dans les milieux de culture possèdent effectivement des propriétés immunogènes vaccinantes, comme l'atteste leur capacité d'induire la production in Vivo d'anticorps, analogues aux anticorps anti-HBsAg humains et actifs contre le virus de l'hépatite, plus particulièrement de l'hépatite B, quand elles sont administrées in vive, notamment chez la souris ou le lapin, selon les protocoles expérimentaux couramment utilisés pour vérifier l'immunogénicité des antigènes HBs naturels, extraits de sérums humains. L'invention concerne donc également les préparations nouvelles utilisables pour la constitution de vaccins, caractérisées en ce qu'elles consistent en des protéines ayant les propriétés immunagéniqûes et immunologiques caractéristiques de l'antigène HBsAg,ayant un niveau de pureté total pour ce qui est de l'absence de toute particule de Dane, d'antigène HBc et de tout composant sérique d1 origine humaine. L'invention concerne encore plus particulièrement des compositions de vaccins contenant lesdits antigènes (tels qu'ils peuvent être récupérés à partir des milieux de culture desdites cellules co-transformées ou de lysats de ces dernières), le cas échéant, associés à tout véhicule pharmaceutique approprié à la constitution de vaccin actif contre l'hépatite virale, susceptible d'être administré par voie orale ou parentérale. Elle concerne également les réactifs de laboratoire contenant des doses déterminées de ces antigènes, susceptibles notamment d'être utilisés à titre d'étalons ou de références vis-à-vis desquels peut etre apprécié le degré de pureté de préparations contenant des antigènes HBsAg, d'origine naturelle ou non, en ce qui con cerne en particulier leurs teneurs relatives en protéines sphériques, ou autres antigènes, tels que HBcAg ou HBeAg, etc. L'invention sera encore davantage illustrée par la description d'exemples de mise en oeuvre des plasmides modifiés (qui font eux-mêmes partie de l'invention) en vue de la fabrication des antigènes ayant des propriétés immunologiques de l'HBsAg. Il sera à cette occasion encore fait référence à la figure 1 déjà mentionnée et aux figures 2a, 2b et 2c, lesquelles représentent des cartes sc- matiques des plasmides préférés qui ont été mis en oeuvre. Les nombres entre parenthèses renvoient à la bibliographie ajoutée à la fin de la présente description. EXEMPLE I : Construction d'un recombinant contenant 1'ADN du virus de l'hépatite virale B. 200 ng de pBR 322 sont soumis à digestion par l'endonucléase EcoRI et traités avec 2,6 unités de phosphatase alcaline dans 100 nM de Tris-HCl, pH 8, à 600C pendant 60 minutes. Après deux extractions au phénol, puis trois extractions à l'éther, l'ADN est précipité par l'éthanol. Le résidu solide est dissous dans de l'eau et l'on ajoute à la solution 100 ng de Eco HBV DNA. La ligature est effectuée selon la méthode décrite dans (1). On procède à une culture de E. coti DP 50 dans un milieu de culture constitué par un bouillon L contenant 100 vg/ml d'acide diaminopimélique et 20 pg/ml de thymidine. Les bactéries sont alors transformées selon la méthode sus-visée par le mélange des recombinantssélection- nés selon leur capacité de résistance à des doses de 100 pg/ml d'ampicilline et 15g/ml de tétracycline. 900 colonies sont obtenues. Elles sont toutes testées en vue de la détermination de la présence ou non de HBV DNA par hybridation in situ. Le test est positif pour 800 colonies. On recueille les î6 colonies qui indulsent un signal d'hybridation d'intensité plus élevée. Les plasmixes sont extraits et leur structure est analysée par digestion en présence de EcoRI, Xho I, Hind III et Xba I. La structure du recombinant obtenu résulte des figures 2a et 2b dans lesquelles ont été schématiquement représentés, d'une part, la structure du gène Eco HBV DNA et, d'autre part, la structure du plasmide modifié pCP10 et telle qu'elle résulte de l'insertion dans le plasmide pBR 322. d'un fragment d'ADN constitué par deux fragments Eco HBV DNA successifs, la tête de l'un étant reliée à la queue de l'autre, au niveau d'un site EcoRI (insertion en tandem tête à queue). Il s'est avéré que parmi les 16 colonies cidessus qui ont été retenues, 14 d'entre elles hébergeaient des plasmides du type pCP 10, dans lesquels les deux Eco HBV DNA-se trouvaient insérés selon l'arrangement tandem tête à queue dans les deux directions d'orientation possibles. C'est en particulier grâce aux digestions avec les endonucléases Hind III et Xba I qu'il a été possible de déterminer les directions d'insertion des fragments d'ADN Eco HBV DNA. Les intégrations dans le plasmide pCP 10 de deux fragments Eco HBV DNA sont démontrées par la digestion en présence de l'endonucléase Xho I, lesquelles produisent l'excision d'un fragment d'ADN ayant une taille similaire à celle de Eco HBV DNA à partir du plasmide hybride pCP 10. Ce dernier comporte 10.626 paires de bases. Les positions respectives du gène S dans Eco HBV DNA (figures 2a et 2b) et dans le plasmide hybride pCP 10 sont respectivement représentées par les flèches S dessinées en traits renforcés. Les petites flèches latérales situent les positions relatives de certains des sites de restriction dans les chaînes d'ADN correspondantes. Les positions des facteurs de résistance à l'ampicilline (ApR) et à la tétracycline (TcR) sont également représentées de façon schématique. Les mêmes conventions s'appliquent au plasmide pAGO (figure 2c) qui a été obtenu par insertion dans le site Pvu II du plasmide pBR 322 du gène de la thymidine kinase du virus Herpès simplex HSV-1 (HSV-tk) (2). Culture et transformation par les susdits plasmides de cellules de souris déficientes en thSmidine-kinase (Ltk-l. Des mutantes de cellules de souris LM déficientes en thymidine-kinase (Ltk ) sont cultivées dans le milieu minimum essentiel MEM O 111 Gibco, le cas échéant en présence de sérum de veau à 10 %. Des monocouches confluentes de ces cellules (2 x 106 cellules par 25 cm ) dans des flacons de Falcon ont été inoculées avec les ADN correspondant auxdits plasmides, en vue de leur transformation, selon la méthode de GRAHAM et VAN DER EB (3) modifiée par STOW et WILKIE (4). On utilise pour effectuer cette transformation à la fois le plasmide pAGO (linéarisé par l'endonucléase Hind III) et le plasmide pCP10 linéarisé ou non par la même enzyme. Dans tous les essais le rapport moléculaire pAGd/pCPIO a été de l'ordre de 1/1.000. On a utilisé de l'ADN de sperme de saumon à titre de véhicule pour ajuster la concentration en ADN à au moins 10 ug/ml. Après la transformation, les cultures cellulaires sont maintenues dans ce milieu contenant en outre 15 pg/ml d'hypoxanthine, 0,1 pg/ml d'amînoptérine et 5 pg/ml de thymidine (milieu sélectif de HAT). 24 heures après la -transformation, on ajoute au milieu une solution de HAT concentrée 100 fois, solution concentrée qui est changée une semaine plus tard, puis tous les trois jours. Après 15 jours de culture en présence des deux types de plasmides (co-transformation) dans le milieu sélectif de HAT, on observe la formation de colonies. 20 jours après la co-transformation, on détecte la production d'HBsAg dans le milieu de culture par des tests radio-immunologiques. Des cultures formées dans les mêmes conditions et transformées à des fins de comparaison avec le seul plasmide pAGO n'induisent aucune production d'HBsAg. Les colonies tks résistantes au milieu HAT sont recueillies avec une pipette Pasteur (20 jours après la co-transformation) et transférées dans des cultures de tissus en microplaques. On effectue des passages des colonies tous les 5 jours et on les maintient sous pression sélective continue dans le milieu de culture HAT. Cinq des colonies obtenues à partir de la co-transformation en présence de pCP 10 linéarisé et 10 colonies obtenues à partir de la co-transformation des cellules de souris avec le pCP 10 circulaire ont été prélevées et cultivées dans le milieu HAT. Toutes les cultures ont produit de l'HBsAG qui a été libéré dans le milieu de culture externe. Les quantités d'HBsAg synthétisé sont variables d'une culture à l'autre (dans des limites se trouvant dans un rapport de 1 à 30). Les quantités produites sont stables, même après plusieurs passages desdites cultures. L'HBsAg peut être récupéré par centrifugation du surnageant des cultures et purifié par centrifugation dans un gradient de densité à base de CsCl. On recueille les HBsAg dans la zone de densité 1,20 giml..Ces HBsAg sont complètement neutralisés par une solutionJde sérum anti-HBsAg (dans un rapport 10/1), après incubation à 370C pendant une heure, comme détectable par les essais de radio-immunologie. A I'examen sous le microscope électronique, on observe des particules sphériques ayant des tailles s'échelonnant de 18 à 25 nm (en moyenne 22 nm). Leur morphologie rappelle celle des particules sphériques d'antigènes de 22 nm qui peuvent être isolées à partir de sérum humain. Des structures filamenteuses telles que celles visibles parmi les antigènes extractibles de sérum humain n'ont pas été observées, du moins dans les conditions de l'expérience. Aucune particule de Dane n'a pu être détectée. Le tableau suivant illustre la capacité de production des cellules de souris tk qui ont été cotransformées par les plasmides en question. Le rapport P/N correspond au rapport du nombre de désintégrations par minute (dpm) mesuré sur le surnageant au nombre de dpm mesuré sur une culture témoin lorsque les dosages de HBsAg sont faits par tests immunologiques 20 jours après la co-transformation des cellules. Un rapport P/N supérieur à 2,1 est considéré comme significatif. TABLEAU Co-transformation de cellules Ltk de souris avec des plasmides pCP10 et pAGO EMI18.1 <tb> Flacon <SEP> pAGO <SEP> pCP10 <SEP> pCP10 <SEP> ADN <SEP> de <SEP> Nombre <SEP> de <tb> <SEP> linéa- <SEP> linéarisé <SEP> circulaire <SEP> sperme <SEP> de <SEP> <SEP> colonies <SEP> P/N <SEP> <tb> <SEP> risé <SEP> linéarisé <SEP> circulaire <SEP> saumon <SEP> tk <tb> b <SEP> 0,010 <SEP> 10 <SEP> ¯ <SEP> ¯ <SEP> 140 <SEP> <tb> <SEP> c <SEP> 0,005 <SEP> - <SEP> 5 <SEP> 15 <SEP> 200 <SEP> 16 <tb> <SEP> f <SEP> 0,010 <SEP> - <SEP> - <SEP> <SEP> 15 <SEP> 26 <SEP> 1 <tb> Après lyse des cellules préalablement lavées, digestion des protéines en présence de protéinase, extraction et purification de l'ADN cellulaire, dosage de l'ADN cellulaire par la technique de SOUTHERN modifiée par WAHL et Coll.(5, 6) en ayant recours à une sonde Eco HBV DNA préparée selon la technique de WEINSTOK et Coll. (7), il a été constaté que la quantité de HBsAg intracellulaire qui avait été synthétisée correspond approximativement au tiers de l1HBsAg qui avait été excrété dans le milieu de culture. Dans les conditions de l'expérience, les clones les plus actifs ont produit jusqu'à 150 ng/ml d'HBsAg. En sus de l'absence déjà mentionnée de particules de Dane, on relève l'absence des antigènes HBcAg et HBeAg au moins à un niveau détectablé par immunofluorescence directe mettant en jeu des anticorps fluorescents d'origine humaine anti-HBc et anti-HBe/1,2,3 (8). On nta pas davantage noté la production d'ADN-polymérase, par mesure de l'activité ADN-polymérase par la méthOde de KAPLAN et Coll. (tant dans le résidu de centrifugation du surnageant que dans celui du lysat des cellules préalablement transformées). Par extraction des ADN de poids moléculaire élevé de certains des clones produits, digestion de ces ADN en présence de EcoRI, Hind III et Xho I, fractionnement des fragments obtenus par électrophorèse sur gel d'agarose, transfert sur des filtres de nitrocellulose, hybridation de ces fragments avec des sondes Eco HBV DNA marquées au phosphore 32, il a été établi que plusieurs copies du plasmide pCP 10 pouvaient être intégrées à 1'ADN cellulaire. Il a été noté également la présence de dimères d'HBV DNA tant dans les copies de plasmide contenues dans les cellules transformées que parmi les fragments éventuellement intégrés dans les ADN cellulaires. I1 a été également déterminé au moyen d'études cinétiques que dans les conditions expérimentales qui ont été décrites, des particules d'antigène HBsAg peuvent etre excrétées dans le milieu par les cellules, à raison de 2 x 104 à 4 x 104 particules/cellules/ 24 heures, soit de 2.000.000 à 4.000.000 de molécules de polypeptides/cellules/24 heures, si l'on suppose que chaque particule contient environ 100 molécules de polypeptides. EXEMPLE II : Expression dans des cellules eucaryotes de vecteurs modifiés par une séquence d'inser tion dérivée de DNA HBV, dont au préalable a été excisée la majeure partie du gène C. 1 ) Clonage de PCPi (résultant de l'insertion du plas- mide pBR 322 linéarisé dans le site EcoRI de DNA HBV). mide¯pBR322 linéarisé dans le site EcoRi de DNA HBV Le plasmide pBR322 hydrolysé par EcoRI a été traité par la phosphatase alcaline, puis ligaturé en présence d'une quantité équimoléculaire de DNA HBV coupé par EcoRi. La flèche PCP9 symbolise, dans la figure 1, le site d'insertion de pBR322 dans le DNA HBV. 20) Construction des clones de la série PAC (contenant des fragments DNA HBV coupés par BglII et PANC (contenant des fragments de DNA HBV coupé par BamHI) Le plasmide pAGO a été hydrolysé par BamHI et traité par la phosphatase alcaline. Les fragments HBV ont été obtenus à partir du plasmide PCPlO décrit ci-dessus, après coupure par HindIII et PstI (qui n'ont pas de site danse DNA HBV) et plus particulièrement, à partir des fragments obtenus, purifiés par électroélution sur un gel d'agarose, et contenant un dimère - ou une séquence "tandem" - de DNA HBV. Ces fragments ont été hydrolysés partiellement, soit par l'enzyme de restriction BglII, soit par l'enzyme BamHI, dans des conditions où seulement deux coupures sont effectuées. Les hydrolysats ont été alors ligaturés en quantités équimoléculaires au plasmide pAGO préalablement coupé par BamHI'(cette ligature mettant à profit le fait que les sites BamHI et BglII sont caractérisés par des parties d'extrémités cohésives communes). Une collection de clones sensibles à la tétracy dinde a été obtenue et analysée afin d'isoler chaque possibilité d'insertion. Des clones PAC12, PAC 14, PAC 16 et PANC34 ont été obtenus. Les flèches accompagnant dans la figure 1 les symboles correspondants, situent les insertions du pBR322 linéarisé dans les sites BamHI ou BglII corres pondancs des séquences de DNA HBV contenues dans les plasmides recombinants obtenus. Ces clones présentaient en outre les caractéristiques suivantes PAT 12 : délétion du fragment BglII 1985-280 PAC14 : délétion du fragment BglII 1986-2U25 PAC16 insertion du génome de pBR322 dans le site 1986 du DA HBV PAi4C3: il contient le génome pBR322 dans le site BamHI 1400 du DNA HBV. Ces clones ont été utilisés pour transformcr des cellules LTK dans les proportions de2 ug de plasmide pour 2.106 cellules. 4 semaines plus tard, les colonie; TK+étaient arrivées à confluence. Le milieu de culture a alors été analysé pour la présence d'HBs par la mise en oeuvre des susdits tests radio-immunologiques. Les capacités ou non-capacités des divers plasmides recombinants d'exprimer le gène S, sous forme d'antigène HBs excrétés dans le milieu de culture, ont été respectivement exprimés dans la figure 1 par des signes"+" et L'expression du gène S dans les clones PAC14 et PACK6 et le défaut d'expression dans le clone PAC12 montrent que la transcription du gène S est initiée dans 1'ADN viral et plus précisément dans le fragment de restriction BglII 2425-2840. Il existe une séquence TATATAA appeiée également "TATATAA Box" située à 72 nucléotides en amont du début de la région "pré-S" qui parait contrôler la transcription du gène S. Le fait qu'aucune expression ne soit obtenue avec le clone PANC34, dans les conditions dans lesquelles l'expérience a été réalisée, est peut-être lié. au fiait que l'ADN codant pour. le mRNA s'arrête après le site BamHI. On retient en particulier le fait que le clone PAC14 , qui produit l'HBs, possède une délétion dans le gène C du virus, ce qui élimine le risque de production de particules virales par la cellule transformée, quelle qu'en soit la nature, et permet son utilisation pour la production d'un vaccin. L'invention fournit donc un produit susceptible d'une pureté inaccessible jusqu'à ce jour. Elle concerne plus particulièrement les préparations formées de particules de protéines ayant les propriétés immunologiques des antigènes HBsAg, essentiellement à l'exclusion ae- protéines sériques. Elles sont tota lerent exemptes de particules de Dane décelables par les méthodes usuelles de dosage radio-immunologique. Elles sont au surplus totalement exemptes de protéines, notamment protéines sériques d'origine humaine. Elles sont exemptes d'ADN polymérase. L'invention conerne également encore les séquences d'ADN d'insertion nouvelles elles-mêmes, telles qu'elles ont été définies plus haut, et les vecteurs, notamment plasmides, contenant lesdites séquences qui sont plus particulièrement caractérisées par le fait qu'elles contiennent le promoteur de la transcription du gène S. Ces vecteurs sont d'un intérêt tout particulier en ce qu'ils peuvent éventuellement être modifiés par insertion d'une séquence d'ADN déterminée correspondant à une protéine dont l'expression dans des cellules eucaryotes serait recherchée. En effet, ce vecteur a l'intérêt particulier de n' être pas toxique à l'égard des cellules en cause. Le promoteur n'est pas réprimé, puisque ces cellules permettent l'expression du gène S. En outre, ce vecteur peut permettre l'excrétion des protéines synthétisées directement dans le milieu de culture. L'une des susdites séquences d'insertion nouvelle peut encore être définie comme contenant, outre le gène S, l'ADN de la région "pré-S" (lequel dans llADN du virus de l'hépatite virale est situé immédiatement à l'amont du gène S dans le sens inverse de la transcription, ce gène comportant de l'ordre de 163 nucléotides), le gène de l'ARN messager du gène S du virus de 11hépatite B, le promoteur de 1'ADN du virus de l'hépatite B, notamment une séquence TATATAA (T abréviation de thymine et A abréviation de lladénine). Elle comprend notamment encore une séquence d'ADN correspondant à une séquence localisée entre les positions nucléotidiques 2425 et 2840 de l'ADN du virus de i'hépatite B. Sont évidemment incluses dans le cadre de l'invention des séquences comportant plusieurs unités du type sus-décrit; notamment des séquences "tandem". La capacité des vecteurs modifiés selon l'in- vention d'être exprimée dans des cellules eucaryotes semble témoigner du fait que la transcription du gène de l'HBsAg est sous le contrôle d'un promoteur viral contenu dans le fragment dérivé d'HBV DNA. Ces vecteurs, tels que le plasmide pCPîO, PAC14 ou PACl6, peuvent être eux-mêmes uti lisés à titre de vecteurs pour réaliser 11 expression dans des cellules eucaryotes d'un ADN étranger préalablement inséré dans lesdits vecteurs. L'avantage des vecteurs modifiés selon l'invention paraît devoir résider dans le fait qu'ils n'induisent pas une lyse des cellules-hôtes. De plus le gène S peut être considéré comme disposant d'une séquence-signal sous le contrôle de laquelle la protéine hybride formée, résultant de l'expression dans les cellules-hôtes de 1'ADN étranger préalablement inséré dans le vecteur susdit, serait excrétée dans le milieu de culture. La récupération de cette protéine hybride s > en trouverait évidemment considérablement facilitée. Bien que le procédé de 1 invention ait été décrit dans ce qui précède, principalement dans son application à DNA HBV, il peut s'étendre à tous autres ADN circulaires ou génomes entiers. En particulier il peut être appliqué à l'étude des ADN circulaires des virus "non A", "non B" des hépatites virales correspondantes. Ci-après la bibliographie relative à l'état de la technique et à laquelle référence est faite dans la description des exemples (1) TIOLLAIS, P., PERRICAUDET, M., PETTERSON, U. & BR< PHILIPSON, L. (1976), Gene 1, 49-63. (2) COLBERE-GARAPIN, F., CHOUSTERMAN, S., HORODNICEANU, F., KOURILSKY, P. & GARAPIN, A.C. (1979), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 76, 3755-3759. (3) GRAHAM, F.L. & VAN DER EB, A.J. (1973) > Virology 52, 456-467. (4) STOW, N.D. & WILKIE, N.M. (1976), J. Gen. Virol. 33, 447-458. (5) SOUTHERN, E.M. (1975), J. Mol. Biol. 98, 503-517. (6) WAHL, G.M., STERN, M. & STARK, G.R. (1979), Proc. Natl. Acad. Sci. USA 76, 3683-3687. (7) EINSTOCK, R., SWEET, R., WEISS, M., CEDAR, H. & BR< AXEL, R. (1978), Proc. Natl. Acad. Sci. USA 75, 1299-1303. (8) TREPO, C., HANTZ, L., VITVITSKI, L., CHEVALLIER, P., WILLIAMS, A., LEMAIRE, J.M. & SEPTJIAN, M. (1978) in Viral Hepatitis,eds. VYAS, G.N., COHEN, S.N. & SCHMID, R. (The Franklin Institute Press) pp. 203-209. (9) SHALOMZ. HIRSCHMAN et Coll., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 77, n 9, pp. 5507-5511, septembre 1980, "Expression of cloned hepatitis B virus DNA in human cell cultures".

Claims: REVENDICATIONS 1 - Procédé pour transformer ou déterminer la possibilité éventuelle de transformation d'une culture de cellules déterminées, notamment eucaryotes,par par un ADN de virus choisis parmi ceux qui sont responsables d'une hépatite ou par le génome correspondant, notamment caractérisé par l'opération qui consiste à transformer cette culture de cellules avec un vecteur, plus particulièrement un plasmide, contenant lui-même une séquence d'insertion comportant elle-même au moins la partie de l'ADN viral codant pour la protéine immunogène, capable d'induire in Vivo la production d'anticorps actifs à l'égard du virus entier, ainsi que le promoteur viral sous le contrôle duquel s'effectuent normalement la transcription et la traduction de la susdite partie d'ADN viral, en particulier chez un hôte infecté par le virus correspondant. 2 - Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la susdite séquence d'insertion est formée de deux unités entières de DNA HBV formant une séquence "tandem". 3 - Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la susdite séquence d'insertion est formée de deux fragments DNA HBV, normalement et respectivement contenus dans DNA HBV, de part et d'autre de son site EcoRI > orientés dans la même direction de transcription, l'un de ces fragments de DNA-HBV contenant la séquence de nucléotides du gène S qui est apte à coder pour le polypeptide responsable des propriétés immunologiques de l'antigène HBs et l'autre desdits fragments étant suffisamment long pour qu'il soit susceptible d'inclure le promoteur du gène S. 4 - Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les ADN orientés sont constitués par des fragments de DNA HBV, la queue de l'un de ces fragments étant reliée à la tête de l'autre fragment au niveau d'un site EcoRI. 5 - Procédé selon la revendication 1, caractérisé par des délétions dans les susdits ADN orientés dans ladite séquence d' insertion les rendant inaptes à coder pour les particules de Dane entières. 6 - Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence d'insertion est dérivée de l'ADN du virus de l'hépatite virale B dont a été délétée une partie suffisante du gène codant pour l'antigène HBc, pour que la production de ces derniers antigènes par les cellules infectées soit rendue impossible. 7 - Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que la séquence d'insertion est formée de l'ADN du virus de l'hépatite virale B, dont a,été délété le fragment délimité par les extrémités BglII au niveau des nucléotides 1986 et 2425 de DNA HBV. 8 - Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que la séquence d'insertion comprend, outre le gène S, et en amont dans le sens inverse de la transcription, un sous-fragment suffisamment long pour qu'y soit incluse la séquence TATATAA, à une distance correspondant à un nombre de nucléotides de 11 ordre de 235 du site EcoRI de DNA HBV. 9 - Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que la séquence d'insertion comprend également en outre un sous-fragment en aval du gène S dans le sens de la transcription, ce fragment s'étendant dans le sens de la transcription au-delà du site BamHI, situé entre le gène S et le gène C. 10 - Procédé selon la revendication 9, caracté r-isé en ce que la susdite séquence d'insertion comprend la totalité du gène codant pour 1'ARN messager correspondant à l'antigène HBs. 11 - Application du vecteur selon l'une quelconque des revendications 1 à lO,à la fabrication des protéines susceptibles d'être codées par les fragments dlADN contenus dans la séquence d'insertion susdite, par transformation d'une culture de cellules eucaryotes, dont aura au préalable été déterminée la possibilité de trans formation par un tel vecteur 12 - Application selon la revendication 11, caractérisée en ce que les cellules transformées sont des fibroblastes de souris. 13 - Application selon la revendication 11, ca ractérisée en ce que les cellules transformées sont des cellules d'origine humaine. 14 - Application selon la revendication 11, caractérisée en ce qu'elle comprend la récupération des protéines excrétées à partir du milieu de culture desdites cellules. 15 - Séquence d t insertion, caractérisée en ce qu'elle est constituée par l'ADN du virus de l'hépatite virale B dont a été délétée une partie suffisante du gène codant pour l'antigène HBc, pour que la production de ces derniers antigènes par les cellules infectées soit rendue impossible. 16 - Séquence d'insertion selon la revendication 15, caractérisée- en ce qu'elle est formée de l?ADN du virus de l'hépatite virale B, dont a été délété le fragment délimité par les extrémités BglII au niveau des nucléotides 1986 et 2425 de DNA HBV. 17 - Séquence d'insertion selon la revendication 15, caractérisée en ce qu'elle comprend, outre le gène S, et en amont dans le sens inverse de la transcription, un sous-fragment suffisamment long pour qu'y soit incluse la séquence TATATAA, à une distance correspondant à un nombre de nucléotides de l'ordre de 235 du site EcoRI de DNA HBV. 18 - Séquence d'insertion selon la revendication 17, caractérisée en ce qu'elle comprend également en outre un sous-fragment en aval du gène S dans le sens de la transcription, ce fragment s'étendant dans le sens de la transcription au-delà du site BamHI, situé entre le gène S et le gène C. 19 - Séquence d'insertion selon la revendication 18, caractérisée en ce qu'elle comprend la totalité du gène codant pour 1' ARN messager correspondant au gène S. 20 - Vecteur modifié par une séquence d'insertion, caractérisé en ce que cette séquence d'insertion est conforme à celle définie dans l'une quelconque des. revendications 15 à 19. 21 - Composition utile pour la fabrication de vaccins,formées par des particules de protéines ayant les propriétés immunogéniques etimmunologiques caractéristiques de l'antigène HBsAg, ayant un niveau de pureté total pour ce qui est de l'absence de toute particule de Dane, d'antigène HBc et de tout composant sérique d'origine humaine. 22 - Composition selon la revendication 21, caractérisée par l'absence d'ADN-polymérase.

Inventors: CHANY, CHARLES, DUBOIS, MARIE FRANCOISE, LOUISE, ANNE, POURCEL, CHRISTINE, TIOLLAIS, PIERRE, Dubois, Marie Françoise
Applicants: INSTITUT NATIONAL DE LA SANTE ET DE LA RECHERCHE MEDICALE, INSTITUT PASTEUR
Application year: 1981
Main classification: C12N15
IPC codes: C12N15, C07K14, A61K39