MYCOTOXIN BINDING MIXTURE

Abstract: 1. A mycotoxin-binding composition, characterized in that it comprises besides of an inorganic substance with large specific surface a crosslinked homopolymer of N-vinyl-2-pyrrolidone.

Description: Mykotoxinbindendes Gemisch Die Erfindung betrifft ein mykotoxinbindendes Gemisch. Es besteht ein Bedürfnis an einem Mittel, durch das pilzbefallene Lebens- und/oder Futtermittel, die wegen der von Pilzen, insbesondere von Keimpilzen, als Stoffwechselprodukte ausgeschiedenen giftigen Toxine an sich ungeniessbar sind, wieder für Mensch bzw. Tier geniessbar gemacht werden können. Zu den am stärksten befallenen Lebensmitteln zählen die Getreideerzeugnisse, wie insbesondere Brot, aber auch Reis, Malz, Fruchtsäfte usw.. Mykotoxin-Produzenten sind vor allem Aspergillus (Schimmel), Claviceps- (Mutterkorn), Penicillium- und Rhizopus-Arten. Bekannte Mykotoxine sind Aflatoxine, Citrinin, Byssochlamsäure, Patulin u.a.. Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, ein Gemisch anzugeben, durch dessen Anwendung Mykotoxine enthaltende Lebens- und/oder Futtermittel für Mensch bzw. Tier wieder ohne Schaden geniessbar werden und das keine Nebenwirkungen im Organismus besitzt. Diese Aufgabe wird mit der Erfindung dadurch gelöst, dass das Gemisch neben einer anorganischen Substanz mit grosser innerer Oberfläche ein kreuzvernetztes Homopolymer des N-Vinyl-2-pyrrolidon enthält. Als anorganische Substanz (Adsorbens) hat sich unter anderem Kieselgur besonders bewährt. In der Regel wird das Gemisch über 50 Gew.-%, vorzugsweise von 70 - 90 Gew.-%, des Homopolymeren enthalten. Besonders bewährt hat sich ein Gemisch aus 20 Gew.-% Kieselgur und 80 Gew.-% kreuzvernetztem Homopolymer des N-Vinyl-2-pyrrolidon. Das erfindungsgemässe Gemisch wird normalerweise dem mykotoxinhaltigen Lebens- oder Futtermittel vor dessen Verzehr zugemischt werden. Es ist aber auch möglich, das Gemisch vor oder bevorzugt nach dem Verzehr von Toxine enthaltenden Lebens- oder Futtermitteln zu verabreichen. In jedem Anwendungsfall entwickelt das erfindungsgemässe Gemisch weder ausserhalb noch innerhalb des Organismus (Mensch oder Tier) eine andere als die gewünschte mykotoxinbindende Wirkung. Das kreuzvernetzte Homopolymer von N-Vinyl-2-pyrrolidon kann z.B. nach dem in der US-PS 2 938 017 beschriebenen Verfahren hergestellt werden: EMI2.1 Das kreuzvernetzte Homopolymer von N-Vinyl-2-pyrrolidon (Polyvinylpolypyrrolidon = PVPP) ist als Desintegrationsmittel für feste Arzneiformen (Tablettensprengmittel11) vorgeschlagen worden (vgl. A. H. Bronnsack, Pharm. Ind. 38, 12, 1181-1185 19762)- PVPP ist ein chemisch und biologisch inertes, in Wasser, Laugen, Säuren und den üblichen organischen Lösungsmitteln unlösliches Pulver, das sowohl bei externer Anwendung als auch bei peroraler Verabreichung nicht toxisch ist (vgl. den vorzitierten Aufsatz von A. H. Bronnsack). Die Herstellung des Gemisches ist problemlos. Es genügt, die Komponenten im gewünschten Mischungsverhältnis händisch oder maschinell abzumischen. Die Wirkung des erfindungsgemässen Gemisches, die auch hinsichtlich ihres Ausmasses ausserordentlich ist, überrascht, da weder Kieselgur noch PVPP für sich alleine genommen diese oder auch nur eine ähnliche Wirkung zeigen. Beispielsweise kann das erfindungsgemässe Gemisch wie folgt zusammengesetzt sein: a) 80 Gew.-% PVPP als rieselfähiges Pulver mit folgenden Eigenschaften: Farbe: praktisch weiss Geschmack: praktisch geschmacklos Eichte (Luft-Beckmann Methode): 1.22 g/cm (Mittelwert) Wassergehalt (Karl Fischer): max. 5 % Aschegehalt: max. 0,4 % Stickstoffgehalt (Dumas): 12 % + 1 % Schwermetallionen: max. 10 ppm Arsen: max. 1 ppm Molekulargewicht: > 1.000.000 Spezifische Oberfläche: OM=1.0 - 1.5 m2/g (Ströhlein AERA-Meter/ BET-Methode) Ov=1.2 - 1.8 mê/cm Wassersorption (aus flüssiger Phase): (mod. Enslin-Methode) a) nach 15 sec. 4.1 - 4.5 ml/s b) nach 15 min. 4.1 - 4.5 ml/s und b) 20 Gew.-% Kieselgur (Diatomeenerde) mit folgenden Eigenschaften: Aussehen: weisses bis hellgraues, feines Pulver Litergewicht: 150 - 300 g Gehalt: 70 - 90 % amorphe Kieselsäure H20: 3 - 12 % Korngrösse: 10 - 40 Nachstehend wird die Methodik und das Ergebnis von in vitro-Untersuchungen der mykotoxinbindenden Wirksamkeit des zuvor beschriebenen Gemisches (= "Testsubstanz-) beschrieben: 1. Problem- und Fragestellung 1.1. Grund der Untersuchung Feststellung der adsorbierenden Wirkung der Testsubstanzmischung bei Mykotoxinen unterschiedlicher chemischer Struktur wie den Aflatoxinen B1, B2, G1 und G2, Zearalenon und Patulin in vitro. 1.2. Grund des Analysenansatzes Für den in vitro-Versuch war ein Kompromiss in der Wahl der Methodik notwendig, um einerseits die physiologischen Verhältnisse im Darm so weitgehend wie möglich zu imitieren, anderseits aber bestmögliche Löslichkeit der in dieser Eigenschaft unterschiedlichen Toxine und damit Wiederauffindung in der Kontrollgruppe und grösstmögliche Reduktion der Auffindung in der Testgruppe durch Adsorption an die Testsubstanz zu erreichen. Daher variierte die Zusammensetzung der Extraktionsmittel im in vitro-Versuch. Feingemahlener Reis sollte den Darminhalt imitieren, um zu zeigen, dass das Adsorptionsvermögen der Testsubstanz wesentlich grösser ist als der normale Futtermittel- oder Darminhaltadsorptionseffekt. 1.3. Versuchsanordnung Für jeden Toxinversuch wurden jeweils 10 Ansätze in Kontroll- und Testgruppe untersucht. Der Kontrollansatz beinhaltete in der Aflatoxingruppe jeweils 0.5 pg/ml Aflatoxin B1, B2, G1 und G2, in der Zearalenongruppe 2 rg/ml Zearalenon und in der Patulingruppe 1 pg/ml Patulin in 50 ml Reis-Lösungsmittelmischung (3g Reis mit dem toxinspezifischen Lösungsmittel auf 50 ml aufgefüllt). Der Testansatz enthielt neben den oben genannten Mengen 125 mg der Testsubstanzmischung. 1.4. Fragestellung a) Wie verhält sich die Wiederauffindung der einzelnen Toxine und damit die Toxinreduktion durch die Test substanz in den Kontroll- und Testansätzen? b) Wie lässt sich das Toxinbindungsvermögen abschätzen, wie verhalten sich diesbezüglich gewichtsgleiche Mengen Reismehl und Testsubstanzmischung? 2. Material und Methoden 2.1. Material a) Testsubstanzmischung: Gemisch gemäss dem vorgenannten Beispiel (80 Gew.-% PVPP und 20 Gew.-% Kieselgur). b) Reismehl: Parboiled-Reis, US-Patna, feingemahlen mit Condux-Mühle, Typ LS 10 M, 0.3 mm. c) Toxinstandards: Aflatoxine: Jeweils 1 mg kristallines Aflatoxin B1, B2, G1 und G2. (Makor Chemicals LTD, Jerusalem, Batch Nr.: 7959- B1 7626- B2 7697- G1 7942- G2 wurden in je 10 ml Chloroform LiChrosolvR (Merck, Art. Nr. 2444) ge löst und gleiche Teile zu einer Arbeitslösung von je 0.025 mg/ml / Toxin gemischt. Zearalenon: 10 mg kristallines Zearalenon (Makor Chemicals, Jerusalem, Batch.Nr. 7893) wurden in 10 ml Chloroform LiChrosolvR (Merck, Art. Nr. 2444) gelöst und so eine Arbeitslösung von 1 mg/ml hergestellt. Patulin: 1 mg kristallines Patulin (Makor Chemicals LTD, Jerusalem, Batch Nr. 7774) wurden in 10 ml Methanol p.a. (Merck, Art. Nr. 6009) zu einer Endkonzentration von 0.1 mg/ml verdünnt. Alle Toxinlösungen wurden bei 40 C aufbewahrt und die Konzentrationen laufend überprüft: d) Lösungsmittel - Extraktionsmittel Puffer (pH 7): 40.8 g KH2PO3 und 7.0 g NaOH in 4.75 1 Aqua dest. gelöst. Aceton ÖAB 9 APOKA Methanol p.a. Merck, Art. Nr. 6009 Chloroform p.a. Merck, Art. Nr. 2445 2.2. Geräte und Arbeitsbedingungen der Hochdruck-Flüssig keitschromatographie Liquid Chromatograph 601 Spektrophotometer LC-55 Recorder 56 Calculating Integrator M-2 (alle Geräte von Perkin Elmer) Trennsäule (Aflatoxine, Zearalenol): Cyano SIL-X-1; 250 mm Länge, 2.6 mm i.D.; (Perkin Elmer), Arbeitstemperatur Raumtemperatur Trenlsäule (Patulin): LiChrosorb RP-8 (5 p); 250 mm Länge, 2.6 mm i.D.; (Knauer), Arbeitstemperatur SO0C. Detektion: Aflatoxin: Absorption bei 365 nm Zearalenon: Absorption bei 274 nm Patulin: Absorption bei 276.5 nm Schreibereingangsspannung 5 mV Papiervorschub 5 mm/min. Chromatographie: Elutionssystem (Aflatoxin): Chloroform p.a. / i-Octan LiChrosolv (68/32); ,, 1300 p.s.i. Druck; 1 ml/min Flussge s chwindi gkeit Elutionssystem (Zearalenon): Chloroform p.a. / i-Octan LiChrosolv (70/30); ¯ 1300 p.s.i. Druck; 1 ml/min Flussgeschwindigkeit Elutionssystem (Patulin): Aqua dest. + 1 % Essigsäure (konz.) / Methanol p.a. (90/10); ¯ 1300 p.s.i. Druck; 1 ml/min Flussgeschwindigkeit Quantifizierung: Peakflächenauswertung nach "externer Standardmethode" mittels Integrator M-2 Berechnung: EMI6.1 KA = Konzentration der Analyse f = Verdünnungsfaktor FA = Peakfläche der Analyse FSt = Peakfläche des Standards KSt = Konzentration des Standards 2.3. Methodik 2.3.1. Probenaufbereitung: Ein Test- und ein Kontrollansatz wurden jeweils parallel bearbeitet, quantifiziert und verglichen. Bei allen drei Toxinversuchsgruppen wurden 3 g Reismehl in 100 ml Erlenmeyerkolben, bei allen Probenansätzen der Testgruppen 125 mg der Testsubstanz zusätzlich eingewogen. Die Toxinstandardlösungen wurden mit einer 100 pl Spritze aufgegeben, um in der gesamten Mischung eine Endkonzentration nach Zugabe der Lösungsmittel von 0.5 rg/ml eines jeden Aflatoxins B1, B2, G1 und G2, von 2.0 pg Zearalenon/ml und 1.0 pg Patulin/ml zu erhalten. Nach Eintrocknen der Standardlösungen wurden die für die jeweiligen Arbeitsansätze geeigneten Lösungsmittelmischungen auf 50 ml aufgefüllt. Lösungsmittelmischung (Aflatoxine): 80 % Puffer, 20 % Aceton Lösungsmittelmischung (Zearalenon): 90 % Puffer, 10% Aceton Lösungsmittelmischung (Patulin) : 100 % Aqua dest. Auf diese Art und BiSe wurden für jedes Toxin 10 Kontrollund 10 Testansätze hergestellt. Um eine gute Durchmischung und einen relativ gleichmässigen Kontakt der Testsubstanz mit dem Toxin zu erreichen, wurden die Proben 30 min auf einem Schüttelgerät (Köttermann) geschüttelt, der Inhalt der Erlenmeyerkolben in 50 ml Zentrifugenröhrchen überführt und 10 min bei 4500 U/min zentrifugiert (Zentrifuge Martin Christ, Typ 2 KS). Die weitere Aufarbeitung erfolgte je nach Toxingruppe differenziert. a) Aflatoxinarbeitsmethode: 35 ml Zentrifugat wurden in einem 50 ml-Schütteltrichter mit 10 ml Chloroform p.a. 15 sec. geschüttelt, nach 5 min wurde die noch nicht völlig von der wässerigen Phase getrennte Chloroformschicht abgesaugt, 3 min bei 2500 U/min zentrifugiert und die klare Chloroformphase in einen 100 ml Rundkolben pipettiert. Dieser Schritt wurde dreimal durchgeführt und die vereinigten Chloroformextrakte bei 40 C in einem Rotationsverdampfer (Büchi-Rotavapor-R mit Köttermann-Vakuum-Absaugung) bis zur Trockene eingedampft. Der Probenextrakt wurde im Kühlschrank (+ 40 C) abgekühlt und erst kurz vor der HPLC-Einspritzung in 1 ml Chloroform aufgenommen. b) Zearalenonarbeitsmethode: Gleich dem Aflatoxinversuch wurden 35 ml Zentrifugenüberstand im 50 ml Schütteltrichter dreimal mit je 10 ml Chloroform p.a. extrahiert, die klare Chloroformschicht zur Trockene eingedampft und zur HPLC-Einspritzung bereitgestellt. c) Patulinarbeitsmethode: Aufgrund der chemischen Struktur ist Patulin wesentlich polarer löslich als Aflatoxin und Zearalenon. Vom trüben Zentrifugenüberstand (4500 U/min) wurden 10 ml in ein Ultrazentrifugenröhrchen pipettiert und 10 min bei 20.000 U/min mit der Ultrazentrifuge (Martin Christ, Typ 2 KS, mit Ultrazentrifugeneinsatz) zentrifugiert. 5 ml dieses Überstandes wurden in einen 100 ml Rundkolben pipettiert und bei 70 C am Rotavapor zur Trockene eingedampft, der Rückstand gekühlt, in 1 ml Methanol p.a. aufgenommen und für die HPLC-Analyse bereitgestellt. 2.3.2. Analyse am Hochdruck-Flüssigkeitschromatograph (HPLC) Die Eingabe in den HPLC erfolgte über eine Probenschleife. Als mobile Phasen wurden toxinspezifisch die unter "Chroma- tographie" beschriebenen Elutionssysteme benutzt. 2.3.3. Berechnung der Wiederauffindung und der Adsorptions verhältnisse Um die Wiederauffindung der Toxine in den Kontroll (K)- und Testgruppen (T) und damit die Wirkung der Testsubstanz zu ermitteln, wurden für jede Toxingruppe Standards eingegeben. Die Konzentrationen waren so gewählt, dass die Peakfläche des Standards einer Wiederauffindung der Toxine von 100 % (Aflatoxin, Zearalenon) oder von 200 z (Patulin) entsprachen. Die Berechnung der Adsorptionsverhältnisse von 1 g Testsubstanz zu 1 g Reismehl wurde nach folgender Formel durchgeführt: AT = Adsorptionseigenschaft von 1 g Testsubstanz AR = Adsorptionseigenschaft von 1 g Reismehl tWK = mittlere prozentuelle Wiederauffindung des Toxins in der Kontrollgruppe gegenüber dem externen Standardmittelwert %WT = mittlere prozentuelle Wiederauffindung des Toxins in der Testgruppe gegenüber dem externen Standard mittelwert EMI9.1 0.125 = Testsubstanz in g EMI9.2 3.000 = Reismenge in g EMI9.3 2.3.4. Statistische Bearbeitung der Ergebnisse Die statistische Absicherung der Ergebnisse erfolgte mit dem Wilcoxon-Test. 3. Ergebnisse: Tabellen und Graphiken 3.1. Aflatoxinversuch Tabelle 1: Retentionszeiten (t) und Peakflächen (F) der Standardaufgaben (n = 5); Konzentration: 25 /ug Aflatoxin B1, 25 /ug B2, 25 rg G1, 25 pg G2/ ml Chloroform LiChrosolv Tabelle 2: Mittelwert (x) und Variationskoeffizient (% V) von Retentionszeit (t) und Peakfläche (F) der in Tabelle 1 angeführten Standardaufgaben Tabelle 3: Retentionszeiten (t) und Peakflächen (F) der einzelnen Aflatoxinansätze; Gegenüberstellung der Proben von Kontroll- und Testgruppen; F entspricht einem aliquoten Teil (35 ml von 50 ml) Tabelle 4: Mittelwerte und Variationskoeffizienten von Retentionszeit (t) und Peakfläche (F) der Einzelwerte aus Tabelle 3, mittlere prozentuelle Wiederauffindung (% W) gegenüber dem mittleren externen Standard und mittlere prozentuelle Reduktion (% R) der Peakflächenwerte in der Testgruppe gegenüber der Kontrollgruppe; % R = % WK - % WT . 100 % WK Tabelle 5: Angabe des Adsorptionsverhältnisses von 1g Testsubstanz zu 1 g Reismehl AT = Adsorptionseigenschaft für Aflatoxin von 1 g Testsubstanz AR = Adsorptionseigenschaft für Aflatoxin von 1 g Reismehl Fig. 1: Vergleich der mittleren Wiederauffindung (% W) der Aflatoxinkonzentrationen B1, B2, G1 und G2 in der Kontroll- und Testgruppe. Die Flächenwerte (F) wurden mit dem Faktor 50/35 (ergibt sich aus dem Probenansatz) korrigiert. Wiederauffindung in der Kontrollgruppe: leere Flächen Wiederauffindung in der Testgruppe: schraffierte Flächen Fig. 2: Vergleich der Flächenwerte der einzelnen Aflatoxine in einigen typischen Proben und im Mittelwert mit der Peakfläche des Standards. a = K2, T2 und St b = K7, T7 und St c = Rg, Tg und St d = Rx, Tx und St Peakfläche des Standards:punktiert begrenzte Flächen Peakfläche der Kontrollansätze: leere Flächen Peakfläche der Testansätze: schraffierte Flächen Fig. 3: Darstellung der Wiederauffindung (% W) der Aflatoxine B1, B2, G1 und G2 in den einzelnen Proben. Links ist die Peakfläche des jeweiligen Standards aufgetragen, die einer Wiederauffindung von 100 % entspricht. Die Ziffern 1, 2 ...... bis 10 bezeichnen die Probenpaare K1 T1 bis K10 T10 Wiederauffindung in der Kontrollgruppe: leere Flächen Wiederauffindung in der Testgruppe: schraffierte Flächen a) Aflatoxin B1 c) Aflatoxin G1 b) Aflatoxin B2 d) Aflatoxin G2 Fig. 4: Chromatogramm einer Aflatoxin-Standard mischung (externer Standard); Konzentration: je 25 /ug Aflatoxin B1, B2, G1 und G2 / ml LiChrosolv; Chromatographie: Spektrophotometer LC-55 (365 nm) Säule: Cyano-SIL-X-1; Elutionssystem: Chlroform p.a./ i-Octan LiChrosolv (68/32); Druck: /u 1300 p.s.i.; Durchflussgeschwindigkeit: 1 ml/min Fig. 5: Chromatogramme der Leerproben; Chromatographie wie Fig. 4; Probenansatz: 3 g Reismehl, Puffer / Aceton-Gemisch (9/1) auf 50 ml aufgefüllt. a) Kontrollprobe b) Testprobe (mit 125 mg Testsubstanz) Fig. 6: Gegenüberstellung der Chromatogramme von K5 und T5. In beiden Ansätzen befinden sich je 25 vug Afla toxin B1, B2, G1 und G2. Der Flächenwert entspricht einem aliquoten Teil (35 ml von 50 ml). a) Kontrollprobe K5 b) Testprobe T5 Fig. 7: Gegenüberstellung der Chromatogramme von K6 und T6; Bedingungen wie Fig. 6. a) Kontrollprobe K6 b) Testprobe T6 3.2. Zearalenonversuch: Tabelle 6: Retentionszeiten (t), Peakflächen (F), Mittelwerte (x) und Variationskoeffizienten (% V) der Standardaufgaben, n = 5; Konzentration: 100 pg Zearalenon / ml Chloroform Li-Chrosolv Tabelle 7: Retentionszeiten (t), Peakflächen (F), prozentuelle Wiederauffindungen (% W) gegenüber dem mittleren externen Standard und prozentuelle Reduktion (% R) der Peakflächenwerte in der Testgruppe gegenüber der Kontrollgruppe; Mittelwerte (x) und Variationskoeffizienten (t V); n = 10; F entspricht einem aliquoten Teil (35 ml von 50 ml) Tabelle 8: Angabe des Adsorptionsverhältnisses von 1g Testsubstanz zu 1g Reismehl AT = Adsorptionseigenschaft für Zearalenon von 1 g Testsubstanz AR= Adsorptionseigenschaft für Zearalenon von 1 g Reismehl Fig. 8: Darstellung der prozentuellen Wiederauffindung (% W) in den einzelnen Proben gegenüber dem externen Standard (St). Links ist die Peakfläche des Standards aufgetragen, die einer Wiederauffindung von 100 % entspricht. Die Ziffern 1, 2 ... bis 10 entsprechen den Probenpaaren K1 T1 bis K10 T10; x bezeichnet den Mittelwert Toxinkonzentration in der Probe: 2 pg Zearalenon/ml Mischung Wiederauffindung in der Kontrollgruppe: leere Fläche Wiederauffindung in der Testgruppe: schraffierte Fläche Fig. 9: Chromatogramm eines Zearalenon-Standards (externer Standard); Z = Zearalenonpeak; Konzentration: 100 pg Zearalenon/ml Chloroform LiChrosolv; Chromatographie: Spektrophotometer LC-55 (274 nm); Säule: Cyano SIL-X-1; Elutionssystem: Chloroform p.a./ i-Octan LiChrosolv (70/30); Druck: N 1300 p.s.i.; Durchflussgeschwindigkeit 1 ml/min Fig. 10: Chromatogramme der Leerproben LK (Fig. 10a) und LT (Fig. 1Ob). Chromatographie wie Fig. 9; Probenansatz: 3 g Reismehl, in LT 125 mg Testsubstanz, Puffer/Aceton (90/10) auf 50 ml aufgefüllt; Der Pfeil zeigt die Stelle im Chromatogramm, die dem Zearalenonpeak entspricht. Fig. 11: Gegenüberstellung der Chromatogramme von K5 und Tg. Chromatographie wie Fig. 9. Toxinkonzentration: 2 /ug Zearalenon/ml Mischung. Der Flächenwert entspricht einem aliquoten Teil (35 ml von 50 ml). a) Kontrollprobe K5 b) Testprobe T5 Fig. 12: Gegenüberstellung der Chrom2dgramme von K7 und T7; Bedingungen wie Fig. 11; a) Kontrollprobe K7 b) Testprobe T7 3.3. Patulinversuch: Tabelle 9t Retentionszeiten (t), Peakflächen (F), Mittelwerte (x) und Standardabweichungen (% V) der Patulin-Standardaufgaben (externer Standard). Konzentration: 10 /ug Patulin/ml Methanol; n = 7; (x von F entspricht einer Wiederauffindung von 200 %) Tabelle 10: Flächenwerte (F) im Bereich des Patulin peaks in den Leerproben LK und Probenansatz: 3 g Reis, bei LT zusätzlich 125 mg Testsubstanz, Aqua dest. auf 50 ml aufgefüllt. Die Fläche entspricht einem aliquoten Teil (5 ml von 50 ml). Tabelle 11: Retentionszeiten (t), Peakflächen (F1, F2), prozentuelle Patulin-Wiederauffindungen (%W1, %dz,) gegenüber dem mittleren externen Standard, prozentuelle Reduktionen (%R1, %R2) der Peakflächen in der Testgruppe gegenüber der Kontrollgruppe; Mittelwerte (x) und Standardabweichungen von t, F1, F2, %W1, %W2, ZR1, %R2. Toxinkonzentration in den Proben: 50 pg Patulin in 50 ml Mischung (1 pg/ml); Der Index 1 gilt für die Ergebnisse ohne Abzug, Index 2 für die Ergebnisse nach Abzug des Leerwertes aus Tabelle 10. Tabelle 12: Angabe der Adsorptionsverhältnisse von 1 g Testsubstanz zu 1 g Reismehl AT = Adsorptionseigenschaft für Patulin von 1 g Test substanz AR = Adsorptionseigenschaft für Patulin von 1 g Reismehl Fig. 13: Darstellung der prozentuellen Wiederauffin dung (% W) von Patulin in den einzelnen Proben gegen über dem externen Standard (St). Links ist jeweils die Peakfläche des Standards aufgetragen, die einer Wiederauffindung von 100 % entspricht. Die Ziffern 1, 2, ... bis 10 entsprechen den Probenpaaren K1 T1 bis K10 T10; x bezeichnet den Mittelwert ; Toxin konzentration in den Proben: 1 Ag Patulin/ml Mischung Wiederauffindung in der Kontrollgruppe: leere Flächen Wiederauffindung in der Testgruppe: schraffierte Flächen a) % W1 ohne Abzug des Leerwertes b) % W2 mit Abzug des Leerwertes (Tabelle 10) Fig. 14: Chromatogramme von Patulin-Standards (externer Standard); P = Patulinpeak; Konzen^ation: 10 pg Patulin/ml Methanol p.a. Chromatographie: Spektrophotometer LC-55 (276,5 nm) Säule: LiChrosorb-RP-8, Elutionssystem: H20 + 1 %. konz. Essigsäure/Methanol p.a. (87/13); Druck: rv 1300 p.s.i., Durchflussgeschwindigkeit: 1 ml/min. Fig. 15: Chromatogramme der Leerproben LK und LT. Probenansatz wie Tabelle 10; Chromatographie: Elutionssystem: Aqua dest.-Essigsäure/Methanol (90/10), sonst wie Fig. 14. Der Pfeil zeigt die Stelle an, die dem Patulinpeak entspricht. a) Kontrollprobe LK b) Testprobe LT Fig. 16: Gegenüberstellung der Chromatogramme K5 und T5; Chromatographie wie Fig. 15; Toxinkonzentration: 50 pg Patulin/50 ml Mischung (1 Ag/ml) Die Flächenwerte entsprechen einem aliquoten Teil (5 ml von 50 ml). a) Kontrollprobe K5 b) Testprobe T5 Fig. 17: Gegenüberstellung der Chromatogramme von K7 und T7. Bedingungen wie Fig. 16. a) Kontrollprobe K7 b) Testprobe T7 3.4. Vergleich der Toxingruppen Tabelle 13: Vergleich der Adsorptionsverhältnisse von 1 g Testsubstanz zu 1 g Reismehl AT Adsorptionseigenschaft von 1 g Testsubstanz AR Adsorptionseigenschaft von 1 g Reismehl Tabelle 14: Vergleich der mittleren prozentuellen Reduktion (x von % R) der Peakwerte in der Testgruppe gegenüber der Kontrollgruppe. Konz. = Konzentration des Toxins im Probenansatz (pg/ml Mischung) Fig. 18: Vergleich der mittleren prozentuellen Wieder auffindungen (% W) und der mittleren prozentuellen Reduktionen (% R) der Peakflächen durch die Testsubstanz. a) 100 % W des jeweiligen Standards b) Aflatoxin B1 (0.5 Fg/ml) c) Aflatoxin B2 (0.5 pg /ml) d) Aflatoxin G1 (0.5 ,ug/ml) e) Aflatoxin G2 (0.5 pg/ml) f) Zearalenon (2.0 Sg/ml) g) Patulin (1.0 Fg/ml) Kontrollgruppe: leere Flächen Testgruppe: schraffierte Flächen 4. Besprechung der Ergebnisse 4. 1. Aflatoxinversuch Bei Annahme einer 100%-igen Wiederauffindung in der Probe und nach Aufwertung durch einen aus der Bearbeitungsmethodik hervorgehenden Faktor entsprechen die Flächenwerte der Toxine in der Probe den Werten des externen Standards. Die paarweise Bearbeitung und daher auch Beurteilung wird bei der statistischen Berechnung berücksichtigt. Der in Tabelle 3 und Fig. 3 in allen Ansätzen sehr deutlich auftretende Unterschied zwischen Kontroll- und Testgruppen wird durch die statistische Berechnung mit einer Wahrscheinlichkeit von über 99 % abgesichert. Alle Flächenwerte und damit auch Wiederauffindungen der Testgruppe liegen unter dem niedrigsten Wert der Kontrollgruppe. Die mittleren prozentuellen Wiederauffindungen der Aflatoxine gegenüber den externen Standards betragen 81.88 % (B1), 86.23 % (B2), 82.88 % (G1) und 90.38 % (G2) in der Kontrollgruppe und in der Testgruppe 31.96 % (B1), 53.96 % (B2), 45.55 % (G1) sowie 58.96 % (G2) (Tabelle 3, Fig. 1). Die mittlere prozentuelle Reduktion der Aflatoxine durch die Testsubstanz beträgt 60.96 % der wiederaufgefundenen Menge Aflatoxin B1, 37.43 % von B2, 45.04 % von G1 und 34.76 % von G2 (Tabelle 4, Fig. 1). Die Reduktion wird wegen der direkt prcportionalen Abhängigkeit auf die wiederaufgefundene Toxinkonzentration der Kontrollgruppe bezogen. Der Probenansatz der Testgruppe enthält 125 mg mehr Festsubstanz (Reis plus Testsubstanzmischung) als die Kontrollgruppe. Daraus könnte man schliessen, das dadurch eine stärkere Bindung des Toxins stattfindet und daher die Testgruppe eine Reduktion der Testkonzentration erfährt. Einem Mehr von 4.17 % an adsorbierender Substanz in der Kontrollgruppe steht eine Toxinreduktion von 34.76 % (G2) bis 60.9 % (B1) durch die Testsubstanz gegenüber (Tabelle 4, Fig. 1). Die auf Gewichtsgleichheit bezogenen Adsorptionsverhältnisse AT (A = 1 : 78,39) für G2 zeigen deutlich den vielfach stär- K keren Adsorptionseffekt der Testsubstanz gegenüber Reismehl (Tabelle 5). 4.2. Zearalenonversuch Auch beim Zearalenonversuch entspricht die Konzentration des externen Standards nach Korrektur der Analysenwerte einer 100%-igen Wiederauffindung. Jeder paarweise Zearalenonprobenansatz zeigte einen positiven Reduktionseffekt (Tabelle 7, Fig. 8), jedoch grössere Streuung als im Aflatoxinversuch. Die prozentuelle Reduktion der Toxinkonzentrationen durch die Testsubstanzmischung variiert von 2.28 % bis 31.31 % (Variationskoeffizient = 70.60 %) (Tabelle 7). Teilweise dürfte diese grosse Streuung durch die relativ niedrige mittlere Wiederauffindbarkeit (x = 58.28 %) des Toxins in der Kontrollgruppe erklärbar sein (Tabelle 7, Fig. 8) und damit auf die Löslichkeit des Toxins zurückzuführen sein. Fig. 8 lässt wiederum die auf gemeinsamen Ansatz, gemeinsame Bearbeitungs- und Beurteilungsbedingungen zurückzuführende Parallelität zwischen den einzelnen Proben der Kontrollund Testgruppe erkennen. Die mittlere prozentuelle Reduktion der Toxinkonzentration beträgt 12.85 % (Tabelle 7). Da alle durchgeführten Analysen der Probenpaare einen positiven Effekt zeigen, kann auf eine deutliche Zearalenonadsorption durch die Testsubstanz geschlossen werden. Die statistische Bearbeitung bestätigt diesen Schluss mit einer Sicherheit von über 99 t. Das Verhältnis der Adsorptionseigenschaften gewichtsgleicher Mengen Reismehl zu Testsubstanzmischung beträgt für Zearalenon 1 : 4.47 (Tabelle 8). Einer Erhöhung der Einwaagemenge (Kontrollansatz mit Reismehl gegenüber Testsubstanz mit Reismehl + Testsubstanzmischung) von 4.17 % steht eine Toxinreduktion von 12.85 % gegenüber. Die Reduktion ist also grösstenteils den 125 mg Testsubstanzmischung zuzuschreiben. Bedingt durch einen Wechsel der Lösungsmittelcharge des Elutionssystems tritt in einer Standardanalyse der Zearalenonpeak erst bei 530 sec Retentionszeit auf. Die Chromatogramme der Lehrproben (Fig. 10) zeigen in einem Bereich von 420 - 780 sec keine interferierenden Störsubstanzen, so dass eine präzise Bestimmung der Identität von Zearalenon gegeben ist. 4.3. Patulinversuch Aus arbeitstechnischen Gründen wurde die Konzentration des externen Patulin-Standards entsprechend einer 200%-igen Wiederauffindung in der Probe gewählt (Fig. 13, Tabelle 11). Die Detektion von Patulin (276.5 mm Absorption) muss als sehr schwierig angesehen werden. Die Chromatogramme der Leerproben weisen im Patulinpeakbereich, wenn auch nur in geringem Mass, Störsubstanzen auf (Tabelle 15). So muss das Ergebnis auf 2 Arten gewertet werden, nämlich mit und ohne Abzug des Flächenwertes der interferierenden Substanz. Es ist nicht verwunderlich, dass ohne Abzug dieses Leerwertes eine Wiederauffindung in Einzelproben bis zu 134.09 % im Kontrollansatz und eine mittlere prozentuelle Wiederauf findung von 118.44 % (% V = 8.85) aufscheint. Eine mittlere prozentuelle Reduktion von 12.42 % (%V = 66.07) wird durch die Testsubstanzmischung erreicht (Tabelle 11). Korrigiert man die Flächenwerte anhand des Leerwertes (Tabelle 10), so ergeben sich mittlere prozentuelle Wiederauffindungen von 70.77 % in der Kontrollgruppe (%V = 14.53), 53.50 % in der Testgruppe (%V = 18.58) und eine mittlere prozentuelle Toxinreduktion von 23.85 % (%V = 50.13). In beiden Fällen geht aus Fig. 13 hervor, dass die Wiederauffindungen des Toxins in allen Doppelproben (K - T) parallel verlaufen. Für jeden paarigen Probenansatz ist durch die Testsubstanzmischung eine deutliche Toxinreduktion festzustellen. Der statistische Vergleich der Probenpaare ergibt daher eine Irrtumswahrscheinlichkeit von nur weniger als 1 %, der adsorbierende Effekt der Testsubstanz ist also zu über 99 % abgesichert. Gleich den Adsorptionsverhältnissen AT beim Aflatoxin- und Zearalenonversuch können auch AR A beim Patulinversuch ( T = 14.84) analoge Schlüsse gezogen werden (Tabelle 12). AR 1 Zusammenfassung der Versuchsergebnisse Die Testsubstanzmischung weist in vitro eine mykotoxinadsorbierende Wirkung auf. Sie ist befähigt, in einem die Verhältnisse des Verdauungstraktes imitierenden Versuch Mykotoxine zu binden. Chemisch unterschiedliche Toxine wie die Aflatoxine B1, B2, G1 und G2 sowie Zearalenon und Patulin zeigen in allen Probenansätzen diesen auf 100%-ige Wiederauffindung bezogenen und somit als mittlere prozentuelle Reduktion bezeichneten Effekt. So beträgt die mittlere prozentuelle Reduktion durch die Testsubstanzmischung bei Aflatoxin B1 60.96 %, B2 37.43 %, G1 45.04 % und G2 34.76 %, bei Zearalenon 12.85 % und bei Patulin 23.85 %. Der Unterschied zwischen Kontroll- und Testgruppe ist für jedes Toxin statistisch gesichert. Die Adsorptionsfähigkeit ist von Toxin zu Toxin unterschiedlich, liegt bei den Aflatoxinen um das 66.12 (B1), 56.24 (B2), 52.33 (G1), 78.39 (G2) bei Zearalenon um das 4.47 und bei Patulin um das 14.84 fache über der Wirkung einer gewichtsgleichen, den Darminhalt darstellenden Menge Reismehl. Tabelle 1 EMI19.1 <tb> <SEP> A <SEP> F <SEP> L <SEP> A <SEP> T <SEP> O <SEP> X <SEP> I <SEP> N <SEP> E <SEP> <tb> n <SEP> B1 <SEP> B2 <SEP> G1 <SEP> G2 <tb> <SEP> t <SEP> 376 <SEP> 488 <SEP> 612 <SEP> 820 <tb> 1 <SEP> F <SEP> 45 <SEP> 320 <SEP> 56 <SEP> 716 <SEP> 44 <SEP> 139 <SEP> 33 <SEP> 923 <tb> <SEP> t <SEP> 372 <SEP> 486 <SEP> 611 <SEP> 818 <tb> 2 <SEP> F <SEP> 44 <SEP> 923 <SEP> 56 <SEP> 301 <SEP> 45 <SEP> 018 <SEP> 33 <SEP> 030 <tb> <SEP> t <SEP> 359 <SEP> 471 <SEP> 595 <SEP> 803 <tb> <SEP> F <SEP> F <SEP> 44 <SEP> 020 <SEP> 55 <SEP> 739 <SEP> 45 <SEP> 361 <SEP> 33 <SEP> 208 <tb> <SEP> t <SEP> 363 <SEP> 475 <SEP> 595 <SEP> 803 <tb> <SEP> F <SEP> F <SEP> 44 <SEP> 543 <SEP> 54 <SEP> 269 <SEP> 44 <SEP> 000 <SEP> 32 <SEP> 498 <tb> <SEP> t <SEP> 360 <SEP> 470 <SEP> 591 <SEP> 801 <tb> <SEP> F <SEP> F <SEP> 44 <SEP> 333 <SEP> 54 <SEP> 849 <SEP> 43 <SEP> 982 <SEP> 33 <SEP> 390 <tb> Tabelle 2 EMI19.2 <tb> <SEP> A <SEP> F <SEP> L <SEP> A <SEP> T <SEP> O <SEP> X <SEP> I <SEP> N <SEP> E 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15 <SEP> 292 <tb> <SEP> t <SEP> 353 <SEP> 433 <SEP> 529 <SEP> 681 <SEP> 361 <SEP> 445 <SEP> 549 <SEP> 701 <tb> 2 <tb> <SEP> F <SEP> 28 <SEP> 127 <SEP> 35 <SEP> 822 <SEP> 28 <SEP> 541 <SEP> 21 <SEP> 469 <SEP> 11 <SEP> 599 <SEP> 23 <SEP> 050 <SEP> 16 <SEP> 915 <SEP> 16 <SEP> 358 <tb> <SEP> t <SEP> 348 <SEP> 432 <SEP> 544 <SEP> 704 <SEP> 354 <SEP> 442 <SEP> 542 <SEP> 690 <tb> 3 <tb> <SEP> F <SEP> 23 <SEP> 639 <SEP> 32 <SEP> 891 <SEP> 25 <SEP> 496 <SEP> 20 <SEP> 214 <SEP> 9 <SEP> 057 <SEP> 19 <SEP> 760 <SEP> 13 <SEP> 757 <SEP> 13 <SEP> 084 <tb> <SEP> t <SEP> 367 <SEP> 455 <SEP> 547 <SEP> 691 <SEP> 364 <SEP> 456 <SEP> 548 <SEP> 688 <tb> 4 <tb> <SEP> F <SEP> 27 <SEP> 434 <SEP> 31 <SEP> 106 <SEP> 25 <SEP> 289 <SEP> 20 <SEP> 905 <SEP> 9 <SEP> 313 <SEP> 18 <SEP> 697 <SEP> 13 <SEP> 072 <SEP> 13 <SEP> 758 <tb> <SEP> t <SEP> 360 <SEP> 444 <SEP> 552 <SEP> 744 <SEP> 368 <SEP> 460 <SEP> 564 <SEP> 720 <tb> <SEP> 5 <tb> <SEP> F <SEP> 24 <SEP> 535 <SEP> 34 <SEP> 513 <SEP> 26 <SEP> 418 <SEP> 21 <SEP> 836 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<SEP> 34 <SEP> 749 <SEP> 27 <SEP> 212 <SEP> 21 <SEP> 005 <SEP> 9 <SEP> 112 <SEP> 21 <SEP> 943 <SEP> 13 <SEP> 224 <SEP> 11 <SEP> 229 <tb> <SEP> t <SEP> 348 <SEP> 458 <SEP> 562 <SEP> 702 <SEP> 358 <SEP> 461 <SEP> 549 <SEP> 695 <tb> 10 <tb> <SEP> F <SEP> 26 <SEP> 732 <SEP> 32 <SEP> 343 <SEP> 24 <SEP> 424 <SEP> 20 <SEP> 193 <SEP> 10 <SEP> 858 <SEP> 20 <SEP> 039 <SEP> 14 <SEP> 973 <SEP> 10 <SEP> 391 <tb> Tabelle 4 EMI21.1 <SEP> KONTROLLGRUPPE <SEP> TESTGRUPPE <tb> <SEP> AFLATOXINE <SEP> AFLATOXINE <tb> <SEP> B1 <SEP> B2 <SEP> G1 <SEP> G2 <SEP> B1 <SEP> B2 <SEP> G1 <SEP> G2 <tb> t <SEP> x <SEP> 359.1 <SEP> 445.3 <SEP> 544.3 <SEP> 707.9 <SEP> 362.0 <SEP> 450.7 <SEP> 545.3 <SEP> 697.7 <tb> <SEP> % <SEP> V <SEP> 3.00 <SEP> 2.93 <SEP> 2.63 <SEP> 4.02 <SEP> 3.85 <SEP> 3.34 <SEP> 2.47 <SEP> 1.72 <tb> F <SEP> x <SEP> 25 <SEP> 580 <SEP> 33 <SEP> 547 <SEP> 25 <SEP> 818 <SEP> 21 <SEP> 009 <SEP> 9 <SEP> 985 <SEP> 20 <SEP> 991 <SEP> 14 <SEP> 190 <SEP> 13 <SEP> 707 <tb> <SEP> % <SEP> V <SEP> 9.19 <SEP> 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<SEP> 41 <SEP> 394 <SEP> 52.27 <SEP> 18.96 <tb> <SEP> 2 <SEP> 389 <SEP> 34 <SEP> 328 <SEP> 43.30 <SEP> 419 <SEP> 33 <SEP> 545 <SEP> 42.36 <SEP> 2.28 <tb> <SEP> 3 <SEP> 422 <SEP> 46 <SEP> 850 <SEP> 59.10 <SEP> 382 <SEP> 43 <SEP> 919 <SEP> 55.45 <SEP> 6.26 <tb> <SEP> 4 <SEP> 407 <SEP> 44 <SEP> 187 <SEP> 55.80 <SEP> 424 <SEP> 40 <SEP> 788 <SEP> 51.50 <SEP> 7.69 <tb> <SEP> 5 <SEP> 346 <SEP> 44 <SEP> 351 <SEP> 56.00 <SEP> 424 <SEP> 42 <SEP> 410 <SEP> 53.55 <SEP> 4.38 <tb> <SEP> 6 <SEP> 418 <SEP> 49 <SEP> 087 <SEP> 61.98 <SEP> 402 <SEP> 45 <SEP> 994 <SEP> 58.07 <SEP> 6.30 <tb> <SEP> 7 <SEP> 402 <SEP> 49 <SEP> 436 <SEP> 62.42 <SEP> 407 <SEP> 39 <SEP> 628 <SEP> 50.04 <SEP> 19.84 <tb> <SEP> 8 <SEP> 431 <SEP> 47 <SEP> 103 <SEP> 59.47 <SEP> 390 <SEP> 32 <SEP> 355 <SEP> 40.85 <SEP> 31.31 <tb> <SEP> 9 <SEP> 405 <SEP> 48 <SEP> 215 <SEP> 60.88 <SEP> 409 <SEP> 40 <SEP> 912 <SEP> 51.66 <SEP> 15.15 <tb> 10 <SEP> 420 <SEP> 47 <SEP> 003 <SEP> 59.35 <SEP> 417 <SEP> 39 <SEP> 140 <SEP> 49.42 <SEP> 16.33 <tb> <SEP> # <SEP> <SEP> 405.4 <SEP> 46 <SEP> 164 <SEP> 58.29 <SEP> 407.4 <SEP> 40 <SEP> 008.5 <SEP> 50.52 <SEP> 12.85 <tb> <SEP> %V <SEP> 5.92 <SEP> 10.13 <SEP> 10.16 <SEP> 3.48 <SEP> 10.59 <SEP> 10.58 <SEP> 70.60 <tb> Tabelle 8 EMI23.1 <SEP> Zearalenon <tb> # <SEP> <SEP> 4.4701 <tb> Tabelle 9 EMI23.2 <tb> n <SEP> t <SEP> F <tb> <SEP> 1 <SEP> 334 <SEP> 33 <SEP> 958 <tb> <SEP> 2 <SEP> 332 <SEP> 34 <SEP> 939 <tb> <SEP> 3 <SEP> 332 <SEP> 33 <SEP> 463 <tb> <SEP> 4 <SEP> 331 <SEP> 34 <SEP> 324 <tb> <SEP> 5 <SEP> 330 <SEP> 34 <SEP> 735 <tb> <SEP> 6 <SEP> 333 <SEP> 34 <SEP> 065 <tb> <SEP> 7 <SEP> 328 <SEP> 33 <SEP> 398 <tb> <SEP> x <SEP> 331.4 <SEP> 34 <SEP> 126 <tb> <SEP> % <SEP> V <SEP> 0.60 <SEP> 1.72 <tb> Tabelle 10 EMI23.3 <tb> <SEP> Kontrollprobe <SEP> Testprobe <tb> <SEP> t <SEP> F <SEP> t <SEP> F <tb> LK <SEP> 457 <SEP> 8048 <SEP> LT <SEP> 424 <SEP> 8504 <tb> Tabelle 11 EMI24.1 K <SEP> O <SEP> N <SEP> T <SEP> R <SEP> O <SEP> L <SEP> L <SEP> G <SEP> R <SEP> U <SEP> P <SEP> P <SEP> E <SEP> T <SEP> E <SEP> S <SEP> T <SEP> G <SEP> R <SEP> U <SEP> P <SEP> P <SEP> E <tb> n <SEP> t <SEP> F1 <SEP> F2 <SEP> %W1 <SEP> %W2 <SEP> t <SEP> F1 <SEP> F2 <SEP> %W1 <SEP> %W2 <SEP> %R1 <SEP> 4R2 <tb> 1 <SEP> 402 <SEP> 22 <SEP> 105 <SEP> 14 <SEP> 057 <SEP> 129.55 <SEP> 82.38 <SEP> 400 <SEP> 16 <SEP> 139 <SEP> 7 <SEP> 636 <SEP> 94.58 <SEP> 44.75 <SEP> 26.99 <SEP> 45.69 <tb> 2 <SEP> 395 <SEP> 21 <SEP> 224 <SEP> 13 <SEP> 176 <SEP> 124.39 <SEP> 77.22 <SEP> 399 <SEP> 16 <SEP> 139 <SEP> 7 <SEP> 636 <SEP> 94.58 <SEP> 44.75 <SEP> 23.96 <SEP> 38.02 <tb> 3 <SEP> 397 <SEP> 18 <SEP> 850 <SEP> 10 <SEP> 802 <SEP> 110.47 <SEP> 63.31 <SEP> 399 <SEP> 17 <SEP> 790 <SEP> 9 <SEP> 286 <SEP> 104.26 <SEP> 54.42 <SEP> 5.62 <SEP> 14.03 <tb> 4 <SEP> 407 <SEP> 22 <SEP> 879 <SEP> 14 <SEP> 831 <SEP> 134.09 <SEP> 86.92 <SEP> 401 <SEP> 20 <SEP> 497 <SEP> 11 <SEP> 993 <SEP> 120.13 <SEP> 70.28 <SEP> 10.41 <SEP> 19.13 <tb> 5 <SEP> 401 <SEP> 21 <SEP> 047 <SEP> 12 <SEP> 999 <SEP> 123.35 <SEP> 76.18 <SEP> 406 <SEP> 20 <SEP> 281 <SEP> 11 <SEP> 777 <SEP> 118.86 <SEP> 69.02 <SEP> 3.64 <SEP> 9.40 <tb> 6 <SEP> 404 <SEP> 19 <SEP> 299 <SEP> 11 <SEP> 251 <SEP> 113.10 <SEP> 65.94 <SEP> 413 <SEP> 17 <SEP> 544 <SEP> 9 <SEP> 040 <SEP> 102.82 <SEP> 52.98 <SEP> 9.09 <SEP> 19.65 <tb> 7 <SEP> 394 <SEP> 16 <SEP> 868 <SEP> 8 <SEP> 820 <SEP> 98.86 <SEP> 51.69 <SEP> 395 <SEP> 15 <SEP> 624 <SEP> 7 <SEP> 120 <SEP> 91.57 <SEP> 41.73 <SEP> 7.37 <SEP> 19.27 <tb> 8 <SEP> 396 <SEP> 20 <SEP> 251 <SEP> 12 <SEP> 203 <SEP> 118.68 <SEP> 71.52 <SEP> 396 <SEP> 16 <SEP> 323 <SEP> 7 <SEP> 819 <SEP> 95.66 <SEP> 45.82 <SEP> 19.40 <SEP> 35.93 <tb> 9 <SEP> 400 <SEP> 20 <SEP> 817 <SEP> 12 <SEP> 769 <SEP> 122.00 <SEP> 74.83 <SEP> 398 <SEP> 18 <SEP> 282 <SEP> 9 <SEP> 778 <SEP> 107.14 <SEP> 57.31 <SEP> 12.18 <SEP> 23.41 <tb> 10 <SEP> 402 <SEP> 18 <SEP> 751 <SEP> 10 <SEP> 703 <SEP> 109.89 <SEP> 62.73 <SEP> 403 <SEP> 17 <SEP> 710 <SEP> 9 <SEP> 206 <SEP> 103.79 <SEP> 53.95 <SEP> 5.52 <SEP> 14.00 <tb> x <SEP> 399.8 <SEP> 20 <SEP> 209.2 <SEP> 12 <SEP> 161 <SEP> 118.44 <SEP> 70.77 <SEP> 401.3 <SEP> 17 <SEP> 633 <SEP> 9 <SEP> 129 <SEP> 103.34 <SEP> 53.50 <SEP> 12.42 <SEP> 23.85 <tb> % <SEP> v <SEP> 1.053 <SEP> 8.85 <SEP> 14.70 <SEP> 8.85 <SEP> 14.53 <SEP> 1.37 <SEP> 9.62 <SEP> 18.58 <SEP> 9.62 <SEP> 18.58 <SEP> 66.07 <SEP> 50.13 <tb> Tabelle 12 EMI25.1 <tb> . <SEP> Patulin <tb> <SEP> # <SEP> 14.84 <tb> Tabelle 13 EMI25.2 <tb> <SEP> AT <tb> <SEP> AR <tb> Aflatoxin <SEP> B1 <SEP> 66.12 <tb> <SEP> B2 <SEP> 56.24 <tb> <SEP> G1 <SEP> 52.33 <tb> <SEP> G2 <SEP> 78.39 <tb> <SEP> Zearalenon <SEP> 4.47 <tb> Patulin <SEP> 14.84 <tb> Tabelle 14 EMI25.3 <tb> <SEP> Konz. <SEP> x <SEP> von <SEP> % <SEP> R <tb> Aflatoxin. <SEP> B1 <SEP> 0.5 <SEP> 60.97 <tb> <SEP> B2 <SEP> 0.5 <SEP> 37.42 <tb> <SEP> G1 <SEP> 0.5 <SEP> 45.04 <tb> <SEP> G2 <SEP> 0.5 <SEP> 34.76 <tb> Zearalenon <SEP> 2.0 <SEP> 13.33 <tb> Patulin <SEP> 1.0 <SEP> 24.93 <tb> Neben Kieselgur können als anorganische Substanz (Adsorbens) z.B. noch folgende Stoffe verwendet werden: Synthetische Kieselsäuren: AEROSIL, hochreine synth. Kieselsäure, SiO2 Aussehen: rein weisses, sehr feines lockeres Pulver Stampfdichte: ca. 50 g/l Schüttgewicht: 40 - 60 g/l Teilchengrösse: 10 - 40 m,u Trockenverlust: ca. 1,3 % Gehalt: ca. 99 % Kieselsäure BET-Oberfläche: 130 - 380 m2 /g SIPERNAT, synth. Kieselsäure SiO2 Aussehen: rein weisses lockeres Pulver Stampfdichte: 80 - 200 g/l Teilchengrösse: 5 - 80 m Trockenverlust: 3 - 6 % Gehalt: 98 - 99 % Kieselsäure BET-Oberfläche: 110 - 190 m2 /g BOLUS ALBA, Aluminiumsilikate wechselnder Zusammensetzung Aussehen: weisses, feines Pulver Schüttgewicht: 400 - 600 g/l Teilchengrösse: 10 - 20 /u Trockenverlust: 0,7 - 1 % Glühverlust: 5 - 6 % Gehalt Aluminiumsilikate: min. 65 % Quarzanteile: ca. 25 % ALUMINIUMSILIKAT, gefällt, Al2SiO5 Aussehen: weisses, feines, rieselfreudiges Pulver Trockenverlust: max. 6 % Glühverlust:max. 7 % Stampfdichte: ca. 140 g/1 BET-Oberfläche: 100 mê/g Analyse SiO2: 82 % Na20 : 8 % Al203: min. 9,6 % Fe203: 0,03 % ALUMINIUMOXID, A1203 Aussehen: rein-weisses, rieselfreudiges Pulver Trockenverlust: ca. 5 % Glühverlust: ca. 3 % Stampfdichte: ca. 60 g/l BET-Oberfläche: 100 m2 /g Gehalt Al203: ca. 97 % Als Adsorbentien kommen ausserdem noch in Frage: Magnesiumsilikate und Magnesiumoxid.

Claims: Patentansprüche 1. Mykotoxinbindendes Gemisch, dadurch gekennzeichnet, dass es neben einer anorganischen Substanz mit grosser innerer Oberfläche ein kreuzvernetztes Homopolymer des N-Vinyl 2-pyrrolidon enthält. 2. Gemisch nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass es mehr als 50 Gew.-% kreuzvernetztes Homopolymer des N-Vinyl-2-pyrrolidon enthält. 3. Gemisch nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass es 70 bis 90 Gew.-% kreuzvernetztes Homopolymer des N-Vinyl-2-pyrrolidon enthält. 4. Gemisch nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekenn zeichnet, dass es als anorganische Substanz Kieselgur enthält. 5. Gemisch nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dass es 20 Gew.-% anorganische Substanz, insbesondere Kieselgur, und 80 Gew.-% kreuzvernetztes Homopolymer des N-Vinyl 2-pyrrolidon enthält. 6. Gemisch nach einem der Ansprüche 1 und 3 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass es als anorganische Substanz synthetische Kieselsäure enthält. 7. Gemisch nach einem der Ansprüche 1 und 3 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass es als anorganische Substanz Sili kate, wie Magnesiumsilikate oder Aluminiumsilikate, z.B. gefälltes Aluminiumsilikat (Al2SiO5), enthält. 8. Gemisch nach einem der Ansprüche 1 und 3 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass es als anorganische Substanz Alumi niumoxid enthält. 9. Gemisch nach einem der Ansprüche 1 und 3 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass es als anorganische Substanz Magne siumoxid enthält.

Inventors: SAGMEISTER, FRANZ, DR.
Applicants: SAGMEISTER, FRANZ, DR.
Application year: 1981
Main classification: A23L3
IPC codes: A23L1, C08K3, A23L3, A23K1