PROCESS FOR THE PREPARATION OF ENZYMATICALLY OBTAINED OLIGOMER OF L-AMINO ACID, AND USES

Abstract: An enzymatically obtained oligomer of L-amino acid containing residues of L-methionine, a process for its preparation and its uses as an agent for fortifying foods poor in methionine and as an intermediate product in the production of L- methionine from DL-methionine, which oligo-L-amino acid consists essentially of oligomers having a chain length of from 5 to 10 residues of L-amino acid with an average length of 8, is described. The homo-oligomer may be prepared by reacting an ester of methionine with a thiol-protease in an aqueous medium having a pH of from 5 to 7 and at a temperature of 30 to 50 DEG C, deactivating the enzyme and separating the oligo-L- methionine from the reaction medium. A hetero-oligomer may also be prepared by adding an ester of the amino acid in question to the preceding reaction mixture, for example to make the oligomer soluble in water or to improve its digestibility.

Description: Oligomère dc L-acide aminé obtenu par voie enzymatique, procédé de préparation et utilisations La présente invention concerne un oligomère ae Lacide aminé contenant des résidus de L-méthionine obtenu par voie enzymatique constitué essentiellement d'oligomères ayant une longueur de chaine comprise entre 5 et 10 résidus avec une longueur moyenne de 8. L'invention concerne également un procédé de préparation d'un tel oligomère, ainsi que l'utilisation de celui-ci, soit comme substitut de L-méthionine dans la fortification des diètes alimentaires, soit comme produit intermédiaire dans l'ob Invention de L-méthionine à partir de DL-méthionine. Certaines matières alimentaires naturellement pauvres en acides aminés soufrés, telles que les protéines de soja, les protéines de feuilles et les protéines microbien- nes, peuvent ou doivent être fortifiées avec de la méthionine, dans le cadre notamment d'un usage diététique ou infantile. La DL-méthionine, qui est produite par synthèse chimique à l'échelle de 100'000 t par an, est surtout consommée par le betail et la volaille, car son usage en alimentation humaine est sujet à caution. Pour l'homme, seul est actuellement envisagé l'emploi de la L-metnionine, qui est produite à partir de la DL-méthionine, dans un ordre de grarldeur de 50 à 100 t par an, par séparation des deux énantiomères par voie enzymatique. De ce lait, la L-méthionine e-t environ 10 fois plus chère que la DL-méthionine. Des oligomoros d methicnine, principalement le dimère, ont été synthétisés par voie chimique - par réaction de méthionine N-protégée telle que la N carbobenzoxyméthionine avec l'ester éthylique de la mé thionine en présence d'un agent de couplage tel que le cyclohexylcarbodiimide et clivage du groupement protec teur; - à partir des N-carboxyanhydrides ou anhydrides de Leuch's en présence d'amino-acide libre en milieu aqueux à froid à pH 10 (méthode de Hirschmann). Ces méthodes sont coûteuses et mettent en oeuvre des produits instables ou des réactifs de couplage dont la pureté doit être garantie. On a également obtenu des poly-L-méthionines à haut poids moléculaire à partir de N-carboxyanhydrides par polymérisation en milieu anhydre mais impliquant également l'utilisation d'anhydrides de Leuch's difficiles à manipuler. Ces méthodes n'ont cependant pas pu trouver d'application dans la préparation d'additif s alimentaires à cause de leur prix élevé et de la garantie de pureté qui est imposée par l'hygiène alimentaire. On comprend dès lors 11 intérêt de pouvoir disposer, soit d'un produit de remplacement non suspect de la Lméthionine, la libérant dans les conditions d'IngestIon, soit de L-méthionine à un prix relativement modére. L'invention répond précisément à ces deux objectifs. Elle concerne un oligomère de L-acide aminé contenant des résidus de L-méthionine qui est caractérisé par le fait qu > il est essentiellement constitué d'oligomères ayant une longueur de chaine comprise entre 5 et 10 résidus avec une longueur moyenne de 8, et que sa teneur en L-méthionine est comprise entre 60 et 90 % en poids. Selon une forme d'exécution, l'oligomère est un homo-oligomère constitué de résidus de L-méthionine. Un tel oligomère est insoluble dans l'eau et les tampons aqueux et soluble dans le diméthylsulfoxyde (DMSO), sa teneur en azote total est comprise entre 9,5 et 10,5 % et son pouvoir rotatoire spécifique 25 o (a) D est de -12 à -14 (DMSO). Par l'expression "insoluble dans l'eau", on entend indiquer que in vitro l'oligo-L-méthionine ne se dissout pas dans l'eau de façon sensible. Cela ne préjuge en rien, bien au contraire, de sa solubilité in vivo dans les milieux aqueux et les fluides biologiques. Selon une variante, l'oligomère est un hétérooligomère, c'est-à-dire qu'il contient en plus des résidus méthionine, des résidus d'autres acides aminés. Un tel oligomère est par exemple soluble dans les milieux aqueux si on y introduit des résidus d'acides aminés à caractère polaire tel que l'acide glutamique ou aspartique. En variante, il peut présenter une meilleure digestibilité vis-à-vis des enzymes pancréatiques que l'homooligomère de L-méthionine, par exemple par introduction de résidus d'acides aminés à caractère aromatique tel que le tryptophane, la phénylalanine ou la tyrosine, par création de sites supplémentaires de clivage pour les protéases pancréatiques, ce qui facilite l'hydrolyse enzymatique. Par ailleurs, l'oligomère libère, dans les conditions de pH acide telles qu'on les rencontre par exemple dans l'estomac, la L-méthionine. On conçoit dès lors que, par l'intermédiaire de l'oilgo-L-méthionine, il soit possigle d'obtenir la L-méthionine à partir de la DLméthionine, comme décrit plus loin dans l'exposé d'invention. Le processus global, bien que faisant appel à une intervention enzymatique, s'avère meilleur marché pour la préparation de la L-méthionine que le dédoublement enzymatique visé plus haut. L'invention concerne également un procédé de préparation de l'oligomère de L-acide aminé, caractérisé par le fait qu'en milieu aqueux de pH compris entre 5 et 7, on fait réagir un ester de la méthionine et éventuellement d'un ou de plusieurs autres acides aminés avec une thiol-protéase à une température où cette dernière est active, puis qu'on isole l'oligomère de L-acide aminé formé du milieu réaction nel. On remarque que la méthionine de départ peut être indifféremment de la L-méthionine ou de la DL-méthionine. Dans ce dernier cas, le milieu réactionnel contient la Dméthionine qui nta pas. réagi sous forme de son ester. La préparation de l'ester de méthionine, de préférence l'ester méthylique ou éthylique, est un préalable banal, peu onéreux. Cette opération peut être réalisée d'une façon toute simple en faisant réagir la méthionine avec l'alcool correspondant en présence de chlorure de thionyle (SOC12) . Dans le cas d'un hétéro-oligoèère , il suffit d'ajouter au mélange réactionnel constitué par l'ester de méthionine et la thiol-protéase le ou les acides aminés en quantité désirée, sous forme de leur ester, de préférence meihyli- que ou éthylique, préparé comme ci-aessus. On peut employer par exemple : les esters éthyliques de DL- ou de L-tryptophane, de DL-tyrosine, le a, y-diéthylglutamate. Si l'on part d'un acide aminé DL, on obtiendra un résidu L comme indiqué ci-dessus pour la méthionine. Comme thiol-protéase, on utilisera de préférence la papaine, la ficine ou la bromeline, qui sont des enzymes bon marché et abondants. On travaillera alors entre 300C et 50 0C et préférablement autour de 37 C. Comme milieu aqueux réactionnel, on peut choisir tout simplement l'eau et on veillera alors à ce que le pH reste dans les limites ci-dessous indiquées, de préférence constant. Au fur et à mesure du déroulement de la réaction enzymatique, on ajoutera un agent alcalin, comme par exemple de la soude 2N. Une autre possibilité est d'utiliser, à titre de milieu aqueux, une solution tampon, par exemple une solution tampon de sels de sodium d'acides carboxyliques, citrate de Na, succinate de Na, acétate de Na, etc. Le pH du milieu aqueux est déterminant pour la réaction enzymatique et doit être impérativement maintenu entre 5 et 7. Avantageusement, ce pH est choisi autour de 6,5 lorsque la réaction est conduite dans l'eau, et autour de 5,5 lorsque la réaction est conduite dans un tampon. Lorsque la réaction enzymatique de formation de l'oligomère est terminée, le milieu réactionnel, à l'origine clair, s'est transformé en une suspension laiteuse. Avantageusement, on inactive alors l'enzyme, par exemple par un bref chauffage à 90 C, puis on sépare la phase solide qui constitue l'oligomère cherché, de la phase liquide. Outre les impuretés et les sous-produits de la réaction, le milieu réactionnel comprend en solution, lorsque l'acide aminé de départ est sous la forme DL, le D-acide aminé qui n'a pas réagi sous forme de son ester (méthylique ou éthylique). Pour une meilleure pureté des oligomères, on lave la phase solide abondamment à l'eau. Pour faciliter la séparation des phases, on peut centrifuger. On peut également purifier par dialyse ou par ultrafiltration, après avoir remis la phase solide en suspension dans l'eau. De préférence, on diafiltre, c'est-àdire qu'on ultrafiltre en diluant le rétentat. On peut alors diluer de façon continue en maintenant le niveau constant, ou bien de façon discontinue, par ultrafiltration sans dilution, suivied'un réajustement au niveau d'origine avant d'ultrafiltrer à nouveau. On obtient ainsi l'olîgomère de L-acide aminé dont les caractéristiques sont énoncées plus haut et dont les moyens de caractérisation seront indiqués dans les exemples. Mis en présence de pepsine en milieu acide, l'oligomère selon l'invention est hydrolysé et on recueille en majorité de la L-méthionine, accompagnée de di-L-méthionine et tri L-méthionine. C'est dire que, dans le cas d'un homo-oligomère, l'oligo-L-methionine peut jouer le rôle de la L-méthionine proprement dite dans la fortification des matières alimentaires pauvres en méthionine. Dans des conditions de forte acidité, l'oligo-Lméthionine est clivée en L-méthionine, avec un taux de racémisation négligeable. La préparation de l'oîigo-L- méthionine à partir de DL-méthionine, suivie de son hydrolyse en milieu acide, constitue donc un moyen élégant de préparer la L-méthionine à partir de son racémique. Selon une première forme d'exécution du procédé selon l'invention, on dissout dans l'eau un chlorhydrate d'un ester de méthionine en concentration comprise de préférence entre 1 et 2 M. On maintient le pH constant, à 6,5, durant toute la réaction en ajoutant NaOH 2 N. Bien entendu, si la méthionine utilisée est la DL-méthionine, sa concen traction est deux fois plus élevée que si la méthionine de départ est la L-méthionine. L'enzyme, à savoir la papalne, la broméline ou la ficine, est ajoutée à raison de 2 % en poids, de préférence en deux additions de 1 % chacune. En fin de réaction, après environ 6 heures, une suspension laiteuse s'est formée et celle-ci est chauffée brièvement à 90 C pour inactive l'en- zyme qu'elle contient. Les deux phases solide et liquide sont séparées, puis la phase solide, qui représente l'oligo L-méthionine est lavée par diafiltration. Dans une deuxième forme d'exécution, la reaction est conduite à un pH autour de 5,5, dans un tampon de citrate, succinate, ou acétate de sodium. Le même processus expérimental que ci-dessus peut être employé dans le cas d'un hétéroroflgcèère en dissolvant dans l'eau dans la première étape les différents chlorhydrates d'acides aminés envisagés dans les proportions choisies. Les exemples suivants illustrent l'invention et présentent les methodes de caractérisation de l1oligo-L- méthionine. Dans ces exemples, les proportions et pourcentages sont exprimés en valeurs pondérales. Exemple 1 On prépare de façon conventionnelle du chlorhydrate de l'ester éthylique de la L-méthionine par action du SOC12 sur une solution de L-méthionine dans l'éthanol. Ce chlorhydrate est alors dissout dans l'eau, à raison de 300 mg par ml (1,4 M) . La solution est placée dans un pH-stat, de façon à maintenir, durant la réaction, le ph constant à une valeur de 6,5, à l'aide de NaOH 2 N. On ajoute alors, à raison de 1 % en poids d'enzyme, une solution aqueuse 0,1 M de papaine dans la L-cystéine. Une heure plus tard, on ajoute encore 1 % de l'enzyme, comme précédemment. Après 6 heures de réaction à 37 C, au pH maintenu rigoureusement constant à 6,5, le milieu réactionnel, initialement clair, s'est transformé en une suspension laiteuse. On chauffe alors brièvement à 90 0C pour inactiver l'enzyme, puis on sépare la phase solide, qu'on rince abondamment avec de l'eau. Cette phase solide, qui représente l'oligo-Lméthionine brute, est remise en suspension dans 20 fois son poids d'eau, puis placée dans une cellule d'ultrafiltration, munie d'une membrane R Amicon UM 10, sous une pression d'azote de 2,5 atm et à 4 C. L'ultrafiltration est poursuivie jusqu'à une réduction de volume au 20ème, puis le volume initial est restauré par addition d'eau et le processus est répété. Quand environ 100 volumes de filtrats ont été récu pérés, l'ultrafiltration est arrêtée et le rétentat est séché par lyophilisation. Ce rétentat représente l'oligo-L- méthionine purifiée. Caractérisation de 1 'oligo-L-méthionine I. Le spectre infra-rouge (I.R.) effectué à l'état solide à la concentration 1 % dans KBr montre les bandes caractéristiques 3230 cm (s) : N-H stretching caractéristique d'une structure ss. 1710 cm (w) : C=O : groupes carboxyles terminaux 1620 cm (s) : C=O stretching : bande amide I 1520 cm (s) : N=H déformation : bande amide II -l 700 cm (m) : vibration hors du plan : bande amide V II. Le spectre de résonance magnétique nucléaire du proton (R.M.N.) de l'oligo-L-methionine brute dans le dimé thylsulfoxyde (DMSO-d6) à 80 MHz montre les signaux caractéristiques 8,2 ppm : multiplet (2) : groupement amino terminal H2N 4,4 ppm : multiplet (env. 10 x 2) : protons méthylène -O-CH 2 -CH 3 2,4 ppm : multiplet 1,8 ppm : épaule EMI9.1 protons a, ss et y 2,0 ppm : singlet (env. 10 x 2) : protons thioether -S -CH 1,2 ppm : triplet (3) : protons méthyl -O -CH2-CH3 III. Un profil d'élution sur résine R Sephadex G25 fine dans le diméthylsulfoxyde (DMSO) montre que l'oligo-L- méthionine est relativement homogène, le pic principal correspondant, d'après les volumes d'élution et les conditions opératpires, à l'octamère. IV. D'autres éléments de caractérisation sont donnés ci dessous : - insoluble dans l'eau et les tampons aqueux, - soluble dans le diméthylsulfoxyde (DMSO), - contenu en azote total compris entre 9,5 et 10, 5 %, 25 pouvoir rotatoire spécifique tai D = -12 à 140 (DMSO), - dichroisme circulaire a = 19220, deux bandes négati ves à 230 et 195 nm, - analyse élémentaire comparée à celle des analyses élémentaires théoriques (calculées) pour les oligo mères de 6 à 10 résidus méthionine après clivage du groupement ester par hydrolyse : % C = 45,22; % H = 7,62; % N = 10,58, ce qui correspond à un nombre moyen de résidus de 8, - teneur en méthionine comprise entre 78 et 90 t. E x e m p 1 e 2 On répète ce qui est décrit à l'exemple 1, à partir de DL-méthionine au lieu de L-méthionine, en concentration double. Après diafiltration, on obtient la même oligo-Lméthionine que celle de l'exemple 1, ainsi que le démontrent les propriétés physiques et les spectres I.R. et R.M.N. Exemple 3 On repète ce qui est décrit à l'exemple 1, à partir de L-méthionine, mais en utilisant comme enzyme la ficine au lieu de la papaïne. L 'oligo-L-méthionine obtenue est semblable à celle de l'exemple 1. Exemple 4 On prépare l'ester méthylique de la méthionine par action de SOC12 sur une solution de méthionine dans le méthanol, ester méthylique qu'on isole comme chlorhydrate. A partir de cet ester méthylique, utilisé à la place de l'ester éthylique de l'exemple 1 en proportions correspondantes, on répète ce qui est décrit dans cet exemple. On obtient ainsi une oligo-L-méthionine semblable à celle de l'exemple 1. Exemple 5 On modifie le mode opératoire décrit à l'exemple 1 en employant, comme milieu réactionnel, un tampon aqueux constitué d'une solution 1 M de citrate de sodium, dont le pH est de 5,5. Dans ce cas, le pH reste constant durant toute la réaction et, évidemment, aucune addition de NaOH n'est nécessaire; le reste des opérations est identique à ce qui est décrit dans cet exemple 1. On obtient ainsi une oligo-L-méthionine semblable à celle qui est décrite à l'exemple 1. E x e mp 1 e 6 On répète ce qui est décrit à l'exemple 2 à partir de DL-méthionine en utilisant, selon les indications de l'exemple précédent, un tampon d'acétate de sodium 1 M, dont le pH est de 5,5. Là aussi, la concentration de la DLméthionine est double de celle de la L-méthionine seule. On obtient une oligo-L-méthionine semblable à celle décrite aux exemples précédents. Exemple 7 On soumet l'oligo-L-methionine décrite aux exemples précédents à une digestion enzymatique à l'aide de pepsine porcine à raison de 2 % en poids. Pour ce faire, l'oligo-L-methionine est mise en suspension, à raison de 2 % en poids, à pH = 2, à 37 C pendant 24 heures. Dans ce laps de temps, 85 % de 1'oligo-L-méthionine est transormé en produits solubles. Ceux-ci sont essentiellement composés de L-méthionine libre, à côté de traces d'ester éthylique de la L-méthionine, ainsi que de di-L-méthionine et de tri-Lméthionine. Exemple 8 On soumet 1 g d'oligo-L-méthionine décrite aux exemples 1 à 6 à l'hydrolyse acide dans environ 500 ml d'acide chlorhydrique 6N à 105-1100C sous azote pendant environ 20 heures. L'acide est ensuite éliminé par distillation sous pression réduite et l'hydrolysat repris par l'eau. On y identifie la L-méthionine chromatographiquement (couche mince) et électrophorétiquement pure avec environ 1 à 2,5 % de D-méthionine. La faible quantité de D-méthionine présente peut être due à la présence de D-méthionine résiduelle dans 1'oligomère ou à une racémisation due à l'hydrolyse chimique. Le pouvoir rotatoire spécifique de l'acide aminé isolé et o recristallise est {a} D = +22 à +23 (HC1 6N). Par compa- D raison la L-méthionine de qualité analytique du commerce a un 25 ,o + o pouvoir rotatoire {a} D = +23,7 - 0,5 E x e m p l e 9 On dissout dans l'eau environ millimole par ml du chlorhydrate de l'ester éthylique de DL-méthionine et 0,25 millimole par ml de a, y-diéthylglutamate. Cette solu tion est placée dans un pH-stat à 40 C, le pH étant maintenu à 6,5, à l'aide de NaCH 2N. On ajoute alors de la papaine à raison d'l mg/ml. Après 6 h de réaction à pH constant l'en- zyme est inactivé et le précipité blanc séparé par centrifugation est traité par ultrafiltration comme indiqué à l'exemple 1. Le produit est ensuite dispersé dans une solution 0,2 N de NaOH et après 2 h sous agitation à température ambiante on obtient une solution claire. On abaisse le pH de la solution à 10 par addition d'acide chlorhydrique 6N et on traite la solution sur colonne SephadexG-10 pour éliminer les sels en excès et éluer les peptides. La solution neutre obtenue est concentrée sous vide et lyophilisée. L'analyse des acides aminés montre que le produit est composé de 34-35 % d'acide glutamique pour environ 65 % de méthionine. La solubilité dans l'eau à 20 C de l'hétéro-oligomère est > 200 mg/ml contre < lmg/ml pour l'oligo-L-méthionine. On peut, en variant les proportions acide glutamique/méthionine dans le mélange réactionnel, obtenir différentes solubilités de l'oligomère : par exemple, l'acide glutamique représentant 8,5 % de l'oligomère, la solubilité est de 5-10 mg/ml. E x e m p 1 e s 10 - 11 On soumet 1 millimole/ml de chlorhydrate de l'ester éthylique de DL-méthionine et 0,25 millimole/ml de chlorhydrate de l'ester éthylique de DL-tryptophane au traitement enzymatique selon l'exemple 1 et on obtient une poudre blanche insoluble dans l'eau contenant, d'après l'analyse des acides aminés, 11 + 3,5 % de L-tryptcphane (exemple 10). En procédant comme ci-dessus à partir de 0,25 millimole/ml de chlorhydrate de l'ester éthylique de Ltyrosine à la place de celui du DL-tryptophane, on obtient un hétéro-oligomère contenant 14 + 2 % de L-tyrosine (exemple 11). L'adjonction de tryptophane ou de tyrosine dans le milieu réactionnel permet de faciliter la digestion enzymatique de l'oligomère par les protéases pancréatiques comme montré ci-après Une dispersion à 5 % des oligomères dans l'eau est soumise à une digestion par 5 mg/ml de pancréatine dans un pH-stat à pH 8 à 40 C. A différentes périodes, des échantillons sont soumis à la réaction avec la ninhydrine pour déterminer leur teneur en azote en position a dans la fraction soluble. Les résultats sont indiqués dans le tableau cidessous EMI14.1 <tb> Exemple <SEP> Oligomère <SEP> % <SEP> d'azote <SEP> en <SEP> position <SEP> a <SEP> après <tb> <SEP> -h <SEP> de <SEP> digestion <tb> <SEP> 1 <SEP> h <SEP> 6 <SEP> h <SEP> 20 <SEP> h <tb> <SEP> 1 <SEP> méthionine <SEP> 9 <SEP> 24 <SEP> 39 <tb> <SEP> 10 <SEP> ' <SEP> méthionine/ <SEP> 29 <SEP> 49 <SEP> 79 <tb> <SEP> tryptophane <tb> <SEP> 11 <SEP> méthionine/ <SEP> 25 <SEP> 46 <SEP> 56 <tb> <SEP> tyrosine <SEP> <tb>

Claims: Revendications 1. Oligomère de L-acide aminé contenant des résidus de L-méthionine obtenu par voie enzymatique, caractérisé par le fait qu'il est essentiellement constitué d'oligomères ayant une longueur de chaîne comprise entre 5 et 10 résidus avec une longueur moyenne de 8, et que sa teneur en L-méthionine est comprise entre 60 et 90 % en poids. 2. Oligomère selon la revendication 1, caractérisé par le fait qu'il est constitué de résidus de L-méthionine, qu'il est insoluble dans l'eau et les tampons aqueux et soluble dans le dimethylsulfoxyde (DMSO), que sa teneur en azote total est comprise entre 9,5 et 10,5 % en poids et 25 o que son pouvoir rotatoire spécifique (a) D est de -12 à-14 (DMSO). 3. Oligomère selon la revendication 1, caractérisé par le fait qu'il contient des résidus d'acide aminé à caractère polaire tel que l'acide glutamique ou aspartique ou d'acide aminé à caractère aromatique tel que le tryptophane, la phénylalanine ou la tyrosine. 4. Procédé de préparation ae l'oligomère de Lacide aminé selon la revendication 1, caractérisé par le fait qu'en milieu aqueux de pH compris entre 5 et 7, on fait réagir un ester de la méthionine et éventuellement d'un ou de plusieurs autres acides aminés avec une thiol-protéase à une température où cette aernière est active, puis qu'on isole l'oligomère de L-acide aminé formé du milieu réaction nel. 5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait qu'avant l'isolation de l'oligomère de L-acide aminé on inactive la thiol-protéase. 6. Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait que la méthionine est choisie parmi la L-méthionine et la DL-méthionine. 7. Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait que l'autre ou les autres acides aminés sont choisis parmi l'acide glutamique, le L-tryptophane, le DLtryptophane et la DL-tyrosine. 8. Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait que l'ester de la méthionine et de l'un ou des autres acides aminés est l'ester méthylique ou éthylique. 9. Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait que la thiol-protéase est la papaine, la ficine ou la bromeline et que le milieu aqueux réactionnel est maintenu à un pH compris entre 5 et 7 au moyen d'un pH-stat ou est une solution tampon d'un sel de sodium d'un acide carboxylique. 10. Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait qu'on isole l'oligomère de L-acide aminé par ultrafiltration avec dilution du rétentat au cours de l'opé- ration d'ultrafiltration. 11. Utilisation de l'oligomère de L-acide aminé selon la revendication 1 pour réhausser la valeur nutritive des aliments pauvres en méthionine. 12. Utilisation de l'oligo-L-méthionine selon la revendication 2 comme intermédiaire dans l'obtention de la L-méthionine, caractérisée par le fait qu'on prépare l'oligo-L-méthionine à partir de DL-méthionine, puis qu'on l'hydrolyse en milieu acide.

Inventors: JOST, ROLF
Applicants: SOCIETE DES PRODUITS NESTLE S.A.
Application year: 1980
Main classification: C12P21
IPC codes: C12P13, C07C313, C07C67, C07C323, C07B53, A23L1, C12P21, C08B37, C07C319, C12P19, C07K7, C12P41