URETHANE DERIVATIVES AND THEIR SALTS, THE PREPARATION OF THESE COMPOUNDS AND CORRESPONDING COMPOSITIONS

Abstract: Urethane derivatives of the formula <IMAGE> wherein R<1> is aryl, alkylaryl, haloaryl, nitroaryl, alkoxyaryl, aryloxyaryl acylaryl, alkyl, cycloalkyl, arylalkyl, haloarylalkyl or arylcycloalkyl and R<2> is methyl or ethyl, and their pharmaceutically acceptable salts. Moreover, the manufacture of the above urethane derivatives as well as compositions containing same. Also the use of these derivatives for the treatment or prophylaxis of diseases and to promote animal growth.

Description: Urethan-Derivate und deren Salze, die Herstellung dieser Verbindungen, entsprechende Präparate und die Verwendung dieser Produkte für die Behandlung oder Vorbeugung von Krankheiten und zur Förderung des Wachstums von Tieren. Die vorliegende Erfindung betrifft Urethan-Derivate der allgemeinen Formel EMI1.1 in der R1 Aryl, Alkylaryl, Halogenaryl, Nitroaryl, Alkoxyaryl, Aryloxyaryl, Acylaryl, Alkyl, Cycloalkyl, Arylalkyl, Halogenarylalkyl oder Arylcycloalkyl und R2 Methyl oder Aethyl darstellen, und deren pharmazeutisch verträglichen Salze. Das in Formel I verwendete Symbol Me stellt die Methylgruppe dar. Die erfindungsgemässen Verbindungen und ihre Salze sind wirksam als antibakterielle Mittel und fördern das Wachstum von Widerkäuern und monogastrischen Tieren, welche faseriges Pflanzenmaterial im Blinddarm vergären; ferner sind sie coccidiostatische Mittel, sowie Mittel gegen erhöhten Blutdruck, Malaria und Schweinedysenterie. Der Ausdruck "Acyl" bedeutet einen C1-C7, vorzugsweise C1-C4 Alkancarbonsäurerest, d.h. ein Radikal der Formel EMI2.1 in der R C1-C6 Alkyl oder Wasserstoff darstellt, z.B. Acetyl, Propionyl, Butyryl und dergleichen. Der Ausdruck "Alkoxy't bedeutet eine C 1-C7 niedere Alkylgruppe mit einer Sauerstoffunktion, wie beispielsweise Methoxy, Aethoxy, n-Propoxy und dergleichen. Der Ausdruck "Aryl" bedeutet einen aromatischen Rest erhalten durch Entfernung des Wasserstoffatoms von einem aromatischen Kohlenwasserstoff, wie beispielsweise Phenyl, Pyridyl oder Furyl, insbesondere Phenyl. Der "Aryl"-Rest kann durch verschiedene Gruppen substituiert sein. Ein Substituent am Phenylkern steht vorzugsweise in -Stellung, wie z.B. in -Alkylaryl, z.B. 4-Methyl- phenyl (4-Tolyl), 4-Halogenphenyl, z.B. -Chlorphenyl, -Alkoxyphenyl, z.B. 4-Methoxyphenyl, 4-Alkanoylphenyl, z.B. 4-Acetylphenyl oder in 4-Benzoylphenyl. Der Ausdruck "Alkyl" bedeutet einen C1-C7 geradkettigen oder verzweigten, insbesondere einen C1-C4 Kohlenwasserstoffrest, wie z.B. Methyl, Aethyl, n-Propyl, Isopropyl, n-Butyl. Die "Alkyl"-Gruppe kann durch eine wie vorstehend definierte "Aryl"-Gruppe substituiert sein, wobei eine "Arylakyl"-Gruppe erhalten wird, z.B. 1-Phenyläthyl, 2-Phenyläthyl (Phenäthyl), oder durch eine vorstehend definierte "Halogenaryl"-Gruppe zwecks Erhalts einer 11Halogenarylalkyl'1-Gruppe, z.B. 4-Bromphenäthyl. Der Ausdruck Cycloalkyl bedeutet cyclische Kohlenwasserstoffgruppen mit 3-7 Kohlenstoffatomen, wie z.B. Cyclopropyl, Cyclobutyl, Cyclohexyl und dergleichen, wobei Cyclohexyl bevorzugt ist. Die "Cycloalkyl"-Gruppe kann durch eine vorstehend definierte "Aryl"-Gruppe substituiert sein, wobei eine "Arylcycloalkyl"-Gruppe entsteht, z.B. 2-(Phenyl)-cyclopropyl. Gewisse der Urethan-Derivate der Formel 1, und zwar worin R4 Phenäthyl darstellt, und ihre pharmazeutisch verträglichen Salze werden durch Mikroorganismen der Gattung Streptomyces mit der Stammbezeichnung X-1667, X-14573 und X-14575 erzeugt. Streptomyces sp. X-14667 wurde aus einer Bodenprobe vom Aesculapius-Tempel, Epidaurus, Griechenland, isoliert. Streptomyces sp. X-14573 wurde aus einer Bodenprobe bei der Universität von Arizona, Tempe, Arizona, isoliert. Streptomyces, sp. X-14574 wurde aus einer Bodenprobe in einem Maisfeld in Catskills, New York, isoliert. Streptomyces sp. X-1667, Z-14573 und X-14575 wurden in der Mikroorganismensammlung des United States Department für Landwirtschaft, Agricultural Research Service, Northern Regional Research Laboratories (NRRL), Peoria, Illinois, USA,als gefriergetrocknete Proben deponiert. Die Kulturen wurden bei NRRL am 29. Juni 1978 unter den Identifizierungsnummern NRRL 11336 (X-14667), NRRL 11337 (X-14573) und NRRL 11338 (X-1457q) deponiert. Subkulturen davon wurden am 23. August 1979 als gefriergetrocknete Proben bei American Type Culture Collection, Rockville, Maryland, USA, unter den Identifizierungsnummern ATCC 31551 (X-14667), ATCC 31552 (X-14573) und ATCC 31553 (x-1575) deponiert. Die erfindungsgemässen Urethan-Derivate sind Poly ätherantibiotika und bilden eine Vielzahl pharmazeutisch verträglicher Salze. Diese Salze werden nach an sich bekannten Methoden aus der freien Säureform der Antibiotika hergestellt, beispielsweise durch Waschen der freien Säure in Lösung mit einer geeigneten Base bzw. einem geeigneten Salz. Beispiele solcher pharmazeutisch verträglichen basischen, salzbildenden Stoffe sind Alkalimetallbasen, wie Natriumhydroxid, Kaliumhydroxid, Lithiumhydroxid und dergleichen; Erdalkalimetallbasen, wie z.B. Calciumhydroxid, Bariumhydroxid und dergleichen; und Ammoniumhydroxid. Alkali- oder Erdalkalimetallsalze, welche zur Herstellung von pharmazeutisch verträglichen Salze der Urethan-Derivate der Formel I verwendet werden können, sind z.B. Carbonate, Bicarbonate und Sulfate. Beispiele organischer Basen, welche mit den erfin dungsgemässen Urethan-Derivate pharmazeutisch verträgliche Salze bilden können, sind niedere Alkylamine oder primäre, sekundäre oder tertiäre Hydroxy-niederalkylamine, wie z.B. Aethylamin, Isopropylamin, Diäthylamin, Methyl-nbutylamin, Aethanolamin und Diäthanolamin. Ein besonders bevorzugtes Amin ist N-Methylglucamin. Salze von N-Methylglucamin sind wegen ihrer wasserlöslichkeit von besonderem Wert, wodurch die Verbindungen zur parenteralen Verwendung eingesetzt werden können. MORPHOLOGISCHE MERKMALE Repräsentative Stämme von Streptomyces sp. X-14667, X-14573 und X-13575 besitzen folgende Merkmale: Natriumchloridtolerenz, Hydrolyse von Casein und Reduktion von Nitrat wurden durch die Methoden von Gordon und Smith, J. Bacteriol., 66, 41-48, 1953, bestimmt. Hydrolyse von Stärke wurde nach Wachstum auf Agar mit Actinomyces-Medium (Difco) mit 0,25 o/o löslicher Stärke bestimmt. Der Test wurde durch Ueberschichtung der Schalen mit Jod-Kaliumjodidlösung durchgeführt. Gelatinehydrolyse wurde gemäss Skerman (A Guide to Identification of the Genera of Bacteria, The Williams and Wilkins Co., Baltimore, 1967) getestet unter Verwendung von Actinomyces-Brühe (Difco) mit 2 o/o Agar anstelle von Fleischinfusions-Agar. Alle Versuche wurden bei 280C durchgeführt. Zur Charakterisierung von Wachstum und Pigmentierung wurden die standardisierten ISP-Medien von Shirling und Gottlieb verwendet (die Farbe wurde nach 2-wöchiger Bebrütung bei 28 0C bestimmt). Auch Kohlenstoffverwertung wurde durch die Methode von Shirling und Gottlieb bestimmt (Int. J. Syst. Bacteriol., 16, 313-340, 1966). Zur Beimpfung wurde eine 24 Stunden alte ISP-1 Kulturbrühe homogenisiert und zentrifugiert zwecks Erhalts einer gewaschenen Suspension. Die Fähigkeit des Organismus, bei 10, 28, 37, 5 und 50 C zu wachsen, wurde durch Beimpfung an ISP-1 (Difco) Medium untersucht. Zellwandanalyse wurde durch die Methode von Becker et al. untersucht (Applied Microbiol. 12, 421-423, 1964). Mikroskopische Untersuchung. Streptomyces sp. X-14667, X-14573 und X-14575 erzeugen ein Substratmycel, welches in Sporen nicht fragmentiert, und ein Luftmycel, welches später Sporenketten bildet. Nach 14-tägiger Bebrütung bei 28 0C besitzen die Sporenketten eine Rectusflexibi lis-Form mit mehr als 50 Sporen pro Kette. Die Sporen sind glatt mit einem Grössenbereich ron 0,70 x 0,5 um bis 1,35 x 0,38 vm für X-14667; 0,7 x 0,4 bis 0,45 x 0,4 m für X-14573; 0,8 x 0,5 um bis 0,6 x 1,0 ijm für X-14575. Die Zellwände der Kulturen enthalten das LL-Isomere von Diaminopimelinsäure. Dieses Merkmal ordnet die Mikroorganismen in die Gattung Streptomyces ein (Lechevalier et al., Adv. Appl. Microbiol., 14, 47-72, 1971). Makroskopische Untersuchung. Das Wachstumsverhalten, der Sporulationsgrad, die Farbe der Sporen sowie die Farbe der Rückseite des Mycels und die Anwesenheit von durch Streptomyces sp. X-14667, X-14573 und X-14575 auf verschiedenen festen Nährmedien erzeugtem, löslichem Pigment werden in den nachstehenden Tabellen 1, 2 und 3 zusammengefasst. Tabelle 1. Kulturmerkmale von Streptomyces sp. X-14667 EMI6.1 <SEP> Wachstum: <SEP> Farbe <SEP> der <SEP> Sporena <SEP> Farbe <SEP> der <SEP> Rückseite <tb> Agar-Medium <SEP> Sporulationsgrad <SEP> des <SEP> Mycels <tb> Hefe/Malzextrakt <SEP> mittleres <SEP> Wachstum; <SEP> b(austernweise) <SEP> 31g(ziegelbraum) <tb> (ISP-2)b <SEP> mittlere <SEP> Sporulation <tb> Hafermehl <SEP> (ISP-3)b <SEP> mittleres <SEP> Wachstum; <SEP> b(austernweise) <SEP> 5ge(rosenrot) <tb> <SEP> mittlere <SEP> Sporulation; <tb> <SEP> leicht <SEP> rosafarbene <SEP> Rück <SEP> seite, <SEP> welche <SEP> mit <SEP> NaOH <tb> <SEP> in <SEP> blau <SEP> übergeht <tb> Anorganische <SEP> Salze <SEP> reichliches <SEP> Wachstum; <SEP> 3cb <SEP> (sandfarben) <SEP> 5ie(kupferfarben) <tb> (Stärke <SEP> ISP-4)b <SEP> reichliche <SEP> Sporulation; <tb> <SEP> hydrolysiert <SEP> Stärke <tb> Glycerin/Aspara- <SEP> mässiges <SEP> Wachstum; <SEP> b(austernweiss) <SEP> 31g(ziegelbraum); <tb> gin <SEP> (ISP-5)b <SEP> reichliche <SEP> Sporulation <SEP> 2ec(biskuitfarben) <tb> <SEP> am <SEP> Rande <tb> Czapek-Doxc <SEP> rechliches <SEP> Wachstum; <SEP> 3dc(n <SEP> aturfarben) <SEP> 2gc(baumsfarben) <tb> <SEP> rechliche <SEP> Sporulation <SEP> 2ec(biskuitfarben) <tb> <SEP> am <SEP> Rande <tb> a Die Farbskala wurde Color Harmony Manual, 4th ed., 1958 (Container Corporation of America, Chicago), entnommen. b Medien empfohlen durch das Internationale Streptomycesprojekt (Shirling, E.B. & D. Cottlieb, Int. J. Syst. bacteriol. 16, 313-340, 1966) c Czapek-Dox-Brühe (BBL) mit einem Zusatz von 1.5% Agar. Tabelle 2, Kulturmerkmale von Streptomyces sp. X-14573 EMI7.1 <SEP> Wachstum: <SEP> Farbe <SEP> der <SEP> Sporena <SEP> Farbe <SEP> der <SEP> Rückseite <tb> Agar-Medium <SEP> Sporulationsgrad <SEP> des <SEP> Mycels <tb> Hefe/Malzextrakt <SEP> reichliches <SEP> Wachstum: <SEP> 3cb(sandfarben) <SEP> 5nl(schokoladefar (ISP-2)b <SEP> gute <SEP> Sporulation; <SEP> dunkles <SEP> rot- <SEP> ben) <tb> <SEP> braumes <SEP> lösluches <SEP> Pigment <tb> Hafermehl <SEP> mässiges <SEP> bis <SEP> reichliches <SEP> b(austernweiss) <SEP> 4ie(korkfarben) <tb> (ISP-3)b <SEP> Wachstum; <SEP> mässige <SEP> Sporu <SEP> lation <tb> Anorganische <SEP> Salze <SEP> reichliches, <SEP> Wachstum; <SEP> 5cb(keine <SEP> Be- <SEP> 4nl(schokolade (Stärke <SEP> ISP-4)b <SEP> gute <SEP> Sporulation; <SEP> hydroly- <SEP> zeichnung) <SEP> farben) <tb> <SEP> siert <SEP> Stärke; <SEP> braunes <tb> <SEP> lösliches <SEP> Pigment <tb> Glycerin/Aspara- <SEP> reichliches <SEP> Wachstum; <tb> gin <SEP> (ISP-5)b <SEP> gute <SEP> Sporulation; <SEP> braunes <SEP> 3dc(naturfarben) <SEP> 4nl(schokolade <SEP> lösliches <SEP> Pigment; <SEP> hygro- <SEP> farben) <tb> <SEP> skopisch <tb> Czapek-Doxc <SEP> mässiges <SEP> bis <SEP> reichliches <SEP> 3cb(sandfarben) <SEP> 4ie(korkfarben) <tb> <SEP> Wachstum; <SEP> gute <SEP> Sporulation <tb> a Die Farbskala wurde Color harmony Manual, 4th ed., 1958 (Container Corporation of America, Chicago), entnommen. b Medium empfohlen durch das Internationale Streptomycesprojekt (Shierling, E.B. & D. Gottlieb, Int. J. Syst. Bacteriol. 16, 313-340, 1966) c Czapek-Dox-Brühe (BBL) mit einem Zusatz von 1,5% Agar. Tabelle 3. Kulturmerkmale von Streptomyces sp. X-14575 EMI8.1 <SEP> Wachstum: <SEP> Farbe <SEP> der <SEP> Sporena <SEP> Farbe <SEP> der <SEP> Rückseite <tb> Agar-Medium <SEP> Sporulationsgrad <SEP> des <SEP> Mycels <tb> Hefe/Malzextrakt <SEP> mässiges <SEP> Wachstum; <SEP> b <SEP> (austernweise) <SEP> 4nl <SEP> (Schokolade (ISP-2)b <SEP> spärliche <SEP> Sporulation; <SEP> farben) <tb> <SEP> braunes <SEP> lösliches <SEP> Pigment <tb> <SEP> zur <SEP> Hauptsache <tb> Hafermehl <SEP> mässiges <SEP> Wachstum; <SEP> b <SEP> (austernweise) <SEP> 3ec <SEP> (Farbe <SEP> von <SEP> un (ISP-3)b <SEP> mässige <SEP> Sporulation <SEP> glaciertem <SEP> Porzellan); <tb> <SEP> Punktweise <tb> <SEP> 31g <SEP> (ziegelbraun) <tb> Anorganische <SEP> Salze <SEP> mässiges <SEP> Wachstum; <SEP> b <SEP> (austernweise) <SEP> 31g <SEP> (Ziegel-braun) <tb> (Stärke <SEP> ISP-4)b <SEP> mässige <SEP> Sporulation; <tb> <SEP> hydrolysiert <SEP> Stärke; <tb> <SEP> bräunliches, <SEP> lösliches <tb> <SEP> Pigment, <SEP> wo <SEP> keine <SEP> Hydrolyse <tb> <SEP> 31g <SEP> (ziegelbraun) <tb> <SEP> 3ie <SEP> (kamelfarben) <SEP> an <SEP> iso Glycerin/Aspara- <SEP> mässiges <SEP> Wachstum; <SEP> lierten <SEP> Rändern, <SEP> keine <SEP> 3ie <SEP> kamelfarben) <tb> gin <SEP> (ISP-5)b <SEP> keine <SEP> Sporulation <SEP> Sporulation <tb> <SEP> 41g <SEP> (hell <SEP> gewürzbraun) <tb> <SEP> meistens <SEP> wo <SEP> keine <SEP> Sporu Czapek-Dox <SEP> c <SEP> mässiges <SEP> Wachstum; <SEP> lation; <SEP> 4ie <SEP> (korkfarben) <tb> <SEP> spärliche <SEP> Sporulation <SEP> b <SEP> (austernweise) <SEP> wo <tb> <SEP> fleckenweise <SEP> Sporulation <tb> a Die Farbskala wurde Color Harmony manual, 4th ed., 1958 (Container Corporation of America, Chicago), entnommen. b Madien empfohlen durch das Internationale Streptomycesprojekt (Shirling, E.B. & D. Gottlieb Int. J. Syst. Bacteriol. 16, 313-340, 1966) c Czapek-Dox-Brühe(BBL) mit einem Zusatz von 1,5% Agar. Physiologische Kennzeichen. Die Kohlenstoffverwertung und die Stoffwechselkennzeichen von Streptomyces sp. X-14667, X-14573 und X-14575 werden in den nachstehenden Tabellen 4 und 5 mit dem Monensin erzeugenden Stamm S. cinnamonensis 1712A verglichen. Tabelle 4. Vergleich der Kohlenstoffverwertung von Streptomyces sp. X-14667, X-14573 und X-14575 mit S. cinnamonensis 1712A. Wachstum von: Kohlenstoff- S. cinnamonensis quelle X-14667 X-14r73 X-14575 1712A D-Glucose ++ ++ ++ ++ D-Xylose + ++ ++ ++ L-Arabinose ++ ++ ++ L-Rhamnose - ++ - ++ D-Fructose +(+) ++ ++ ++ D-Galactose ++ ++ ++ ++ Raffinose ++ +(+) ++ D-Mannit ++ ++ ++ ++ i-Inosit + ++ ++ ++ + Salicin bis+ ++ ++ Saccharose - Cellulose * -, Negative Reaktion; -, zweifelhafte Reaktion; +, kräftigeres Wachstum als auf Kontrollprobe aber weniger als auf Glucose; ++ positive Reaktion gleichwertig mit dem Wachstum auf Glucose. Tabelle 5 Stoffwechselmerkmale EMI10.1 <tb> <SEP> Test <SEP> X-14667 <SEP> X-14573 <SEP> X-14575 <SEP> S. <SEP> cinna <tb> <SEP> monensis <tb> <SEP> 1712A <tb> <SEP> ISP-6 <SEP> Verdunkelung <SEP> - <SEP> - <SEP> - <SEP> <tb> <SEP> Melanin, <SEP> ISP-7 <tb> <SEP> Casein-Hydrolyse <SEP> + <SEP> + <SEP> + <tb> <SEP> Gelatine-Hydrolyse <SEP> + <SEP> + <SEP> + <SEP> + <tb> <SEP> Stärka-Hydrolyse <SEP> + <SEP> + <SEP> + <SEP> + <SEP> <tb> <SEP> NaCl-Toleranz <SEP> (%) <SEP> < 10, <SEP> wahr <tb> scheinlich <SEP> 7 <SEP> 7 <SEP> < 10 <tb> <SEP> = <SEP> 7% <tb> <SEP> Temperaturbereich <SEP> 10-37 <tb> <SEP> des <SEP> Wchstums, <SEP> C <SEP> 10-37 <tb> <SEP> ISP-1 <SEP> Verdunkelung <SEP> - <SEP> +,redwood <SEP> +leicht <SEP> +leicht <tb> <SEP> -bräunlich <tb> Pigment <SEP> der <SEP> Rückseite <SEP> leicht <SEP> braun <SEP> braun, <SEP> gele- <SEP> bräunlich, <tb> rot-braun <SEP> gentlich <SEP> gelegent <tb> <SEP> lich <tb> Löslich <SEP> Pigment <SEP> rosafarben; <SEP> rot-braun <SEP> braun <SEP> bräunlich <tb> mit <SEP> NAOH <SEP> um <tb> wandlebar <SEP> in <tb> <SEP> blau <tb> Erzeugung <SEP> von <SEP> Anti- <SEP> Monensin <SEP> A <SEP> und <SEP> B <SEP> sowie <SEP> die <SEP> entsprechen- <SEP> Monensin <tb> biotikum <SEP> den <SEP> Phenäthylurethane <SEP> - <SEP> A <SEP> und <SEP> B <tb> Nitrat-Reduktion <SEP> + <SEP> # <SEP> <SEP> + <SEP> # <SEP> <SEP> in <SEP> 2 <tb> <SEP> Wochen <tb> Hygroskopische <SEP> + <SEP> leicht <SEP> auf <SEP> <tb> <SEP> Eigenschaften <SEP> ISP-5 <tb> Ein Vergleich der Beschreibung von Streptomyces sp. X-14667, X-14573 und X-14575 mit den in Bergey's Manual beschriebenen Streptomyces-Spezies (Buchanan and Gibbons, Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, 8. Auflage, 748-829, 1974), H. Nonomura's Schlüssel zur Klassifizierung (J. Ferment. Technol., 52, 78-92, 1974) sowie die Klassifizierung von Pridham und Lyons (Dev. Ind. Microbiol. 10, 183-221, 1969) zeigte S. cinnamonensis als der ähnlichste Verwandte zu den obigen Stämmen aufgrund der Kombination folgender Kriterien: graue Farbe der Sporen, Rectusflexibilis-Form der Sporenketten, glatte Sporenoberfläche, chromogene Reaktion auf ISP Medien 1 und 6 sowie die Kohlenstoffverwertung. S. cinnamonensis ähnelt X-14667, X-14573 und X-14575, indem sie alle Monensin A und Monensin B erzeugen. S. cinnamonensis unterscheidet sich jedoch von den erwähnten Organismen durch die fehlende Fähigkeit, die Monensinphenäthylurethane zu erzeugen. Die hier beschriebenen Streptomyces-Spezies X-14667, X-14573 und X-14575 schliessen sämtliche Stämme von Streptomyces ein, welche die erfindungsgemässen Monensinphen äthylurethane erzeugen, und welche nicht eindeutig von den Stämmen NRRL 11336 (ATCC 31551), NRRL 11337 (ATCC 31552) und NRRL 11338 (ATCC 31553) und deren Subkulturen, einschliesslich Mutanten und Varianten davon, unterschieden werden können. Mit Hilfe der hier beanspruchten Verbindungen bietet die Differenzierung der diese Verbindungen erzeugenden Stämme von anderen dem Fachmann keine Schwierigkeiten. Streptomyces X-14667, X-14573 und X-14575 erzeugen nach Züchtung unter geeigneten Bedingungen Monensinurethan-Derivate. Die dafür benötigte Gärlösung wird durch Beimpfung des Nährmediums mit Sporen oder Mycel des Mikroorganismus hergestellt; die Nährlösung wird anschliessend unter aeroben Bedingungen kultiviert. Es ist ebenfalls möglich, Kultivierung an einem festen Nährboden durchzuführen. Für die Erzeugung grösserer Mengen wird jedoch ein flüssiges Medium bevorzugt. Die Gärtemperatur kann im weiten Bereich von 20-35 C variiert werden, jedoch sind Temperaturen von 26-3OOC und im wesentlichen neutrales pH bevorzugt. Für die submerse aerobe Fermentation kann das Nährmedium als Kohlenstoffquelle ein im Handel erhältliches Glyceridöl oder ein Kohlenhydrat, wie z.B. Glycerin, Glucose, Maltose, Lactose, Dextrin, Stärke etc. in reinem oder rohem Zustand enthalten; als Stickstoffquelle kommen organische Materialien, wie Soyabohnenmehl, lösliche Rückstände aus der Brennerei, Erdnussmehl, Baumwollsamenmehl, Fleischextrakt, Pepton, Fischmehl, Hefeextrakt, Maisquellwasser etc.1 in Betracht. Erwünschtenfalls können auch anorganische Stickstoffquellen verwendet werden, wie z.B. Nitrat und Ammoniumsalze; Mineralsalze, wie beispielsweise Ammoniumsulfat, Magnesiumsulfat, Natriumchlorid, Kaliumchlorid, Kaliumphosphat, Calciumcarbonat und Spurenmengen von Schwermetallsalzen; Puffer r wie Natriumcitrat, Calciumcarbonat oder -phosphate. Wenn die Fermentation unter belüfteten, submersen Bedingungen durchgeführt wird, verwendet man vorzugsweise ein Schaumbekämpfungsmittel, wie flüssiges Paraffin, fettes Oel oder Siliconprodukte. Mehr als eine Art von Kohlenstoffquelle, Stickstoffquelle bzw. Schaumbekämpfungsmittel können verwendet werden. Die antibiotische Wirksamkeit der erfindungsgemässen Urethan-Derivate wird durch die nachstehende Tabelle 6 veranschaulicht. Tabelle 6 Antimikrobielle Spektren von Urethan-Derviaten von Monensin Mindesthemmkonzentration (mcg/ml)a EMI13.1 <SEP> Staph. <SEP> Srcina <SEP> Strepto <SEP> Baccilus <SEP> Baccilus <SEP> Baccilus <SEP> Baccilus <SEP> Myco- <SEP> Strepto- <SEP> Paecilo <SEP> aureus <SEP> lutea <SEP> coccus <SEP> sp. <SEP> E <SEP> subtilis <SEP> megaterium <SEP> sp. <SEP> TA <SEP> bact. <SEP> coccus <SEP> myces <tb> <SEP> faecium <SEP> phlei <SEP> cellul. <SEP> varioti <tb> <SEP> 6538 <SEP> 9341 <SEP> 8043 <SEP> 27859 <SEP> 583b <SEP> 8011 <SEP> 27860 <SEP> 355 <SEP> 3313 <SEP> 25820 <tb> Monensin <SEP> B, <SEP> Phenäthyl- <SEP> 6.3 <SEP> 3.1 <SEP> 0.8 <SEP> 1.6 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <SEP> 25 <SEP> 12.5 <SEP> urethan <SEP> (hergestellt <tb> durch <SEP> Fermentation) <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Phenäthyl- <SEP> 6.3 <SEP> 1.6 <SEP> 0.4 <SEP> 0.8 <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 1.6 <SEP> 6.3 <SEP> 12.5 <SEP> 12.5 <tb> urethan <SEP> (hergestellt <tb> durch <SEP> Fermentation) <tb> Monensin <SEP> B,(R)-1-Phenyl- <SEP> 6.3 <SEP> 3.1 <SEP> 0.8 <SEP> 0.4 <SEP> 1.6 <SEP> 1.6 <SEP> 1.6 <SEP> 12.5 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <tb> äthylurethan <tb> Monensin <SEP> B,(S)-1-Phenyl- <SEP> 1.6 <SEP> 1.6 <SEP> 0.2 <SEP> 0.1 <SEP> 0.8 <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 6.3 <SEP> 6.3 <SEP> 6.3 <tb> äthylurethan <tb> Monensin <SEP> A4,-Bromphenyl- <SEP> 0.8 <SEP> 0.2 <SEP> 0.1 <SEP> 0.05 <SEP> 0.4 <SEP> 0.1 <SEP> 0.2 <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 1.6 <tb> urethan <tb> Monensin <SEP> A,4-Chlorphenyl- <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 0.05 <SEP> 0.02 <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 0.2 <SEP> 0.8 <SEP> 0.8 <SEP> 3.1 <tb> urethan <tb> Monensin <SEP> A,Phenyl- <SEP> 0.8 <SEP> 0.8 <SEP> 0.1 <SEP> 0.05 <SEP> 0.4 <SEP> 0.4 <SEP> 0.4 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <tb> urethan <tb> Monensin <SEP> A,4-Fluor- <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 0.1 <SEP> 0.2 <SEP> 0.8 <SEP> 0.4 <SEP> 0.8 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <tb> phenylmethan <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Cyclo- <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 0.1 <SEP> 0.2 <SEP> 0.8 <SEP> 0.4 <SEP> 0.8 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <SEP> 3.1 <tb> hexylurethan <tb> Fortsetzung Tabelle 6 EMI14.1 <SEP> Staph. <SEP> Srcina <SEP> Strepto <SEP> Baccilus <SEP> Baccilus <SEP> Baccilus <SEP> Baccilus <SEP> Myco- <SEP> Strepto- <SEP> Paecilo <SEP> aureus <SEP> lutea <SEP> coccus <SEP> sp. <SEP> E <SEP> subtilis <SEP> megaterium <SEP> sp. <SEP> TA <SEP> bact. <SEP> coccus <SEP> myces <tb> <SEP> faecium <SEP> phlei <SEP> cellul. <SEP> varioti <tb> <SEP> 6538 <SEP> 9341 <SEP> 8043 <SEP> 27859 <SEP> 583b <SEP> 8011 <SEP> 27860 <SEP> 355 <SEP> 3313 <SEP> 25820 <tb> Monensin <SEP> A,2-(Phenyl)cyclopropylurtehan <SEP> 3.1 <SEP> 0.8 <SEP> 0.2 <SEP> 0.4 <SEP> 0.8 <SEP> 0.8 <SEP> 0.4 <SEP> 3.1 <SEP> 12.5 <SEP> 6.3 <tb> Monensin <SEP> A,Methyl- <SEP> 25 <SEP> 25 <SEP> 1.6 <SEP> 6.3 <SEP> 1.6 <SEP> 6.3 <SEP> 12.5 <SEP> - <SEP> - <SEP> Monensin <SEP> A,n-Butylurethan <SEP> 1.6 <SEP> 1.6 <SEP> 0.2 <SEP> 0.2 <SEP> 0.4 <SEP> 0.8 <SEP> 0.4 <SEP> 6.3 <SEP> 3.1 <SEP> 6.3 <tb> Monensin <SEP> A,4-(Methylcarbonyl)-phenyl <SEP> 1.6 <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 0.2 <SEP> 1.6 <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 6.3 <SEP> 3.1 <SEP> 6.3 <tb> urtehan <tb> Monensin <SEP> A,4-Phenoxyphenylurtehan <SEP> 0.4 <SEP> 0.4 <SEP> 0.1 <SEP> 0.4 <SEP> 0.4 <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 0.5 <tb> Monensin <SEP> A,4-Jodphenylurdethan <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 0.1 <SEP> 0.02 <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 0.2 <SEP> 1.6 <SEP> 0.4 <SEP> 1.6 <tb> Monensin <SEP> A,4-Methoxyphenylurethan <SEP> 1.6 <SEP> 1.6 <SEP> 0.4 <SEP> 0.1 <SEP> 0.8 <SEP> 0.8 <SEP> 0.8 <SEP> 6.3 <SEP> 1.6 <SEP> 6.3 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Methylphenylurthan <SEP> 0.4 <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 0.05 <SEP> 0.4 <SEP> 0.2 <SEP> 0.2 <SEP> 1.6 <SEP> 0.8 <SEP> 1.6 <tb> (a) Niedrigsgste zweifache Verdünnung mit einer Hemmzone im Agardiffusionstest (b) NRRL Deponierungsnummer, die verbleibenden Nummern sind ATTC-Nummern Aus der in Tabelle 6 angegebenen in vitro-Wirkung der erfindungsgemässen Verbindungen gegen gewisse Grampositive Bakterien kann man schliessen, dass die Verbindungen als antibakterielle Mittel in Waschlösungen für sanitäre Zwecke, wie z.B. zum Händewaschen und Reinigung von Ausrüstungen, Böden bzw. Einrichtungen von kontaminierten Räumen oder Laboratorien, verwendbar sind. Es wurde ferner gefunden, dass gewisse der erfindungsgemässen Urthan-Derivate, d.h. diejenigen der Formel I, worin Rê Aryl, Halogenaryl, Nitroaryl, Alkylaryl oder Cycloalkyl darstellt, sowie ihre pharmazeutisch verträglichen Salze eine Anti-Coccidiosewirkung gegen den Mikroorganismus Eimeria tenella ausüben. Diese Anti-Coccidiosewirkung wird an Laborküken wie folgt veranschaulicht: Versuchsmethode. - Es werden 10 Küken pro Dosis eingesetzt. 10 Küken werden als Gewichtskontrolle und 10 Küken als infizierte Kontrolle verwendet. Die Prüfsubstanz wird 48 Stunden vor der Infektion gegeben. 1 Gramm der Prüfsubstanz wird in einem mechanischen Mixer mit der benötigten Menge Kükenfutter vermischt, um die gewünschte Dosierung zu erreichen. Die Infektion besteht aus etwa 200,000 Oocysten, peroral mit Hilfe einer Pipette verabreicht. Der Versuch dauert elf Tage, wonach die überlebenden Tiere in der Autopsie auf grobe caecale Verletzungen untersucht werden. Die Zahl der überlebenden Tiere und die Zahl der caecalen Verletzungen werden ermittelt. Die Ergebnisse werden als "durchschnittlicher Infektionsgrad" ausgedrückt. Bei einem durchschnittlichen Infektionsgrad von weniger als 2,5 wird die zugehörige Dosis als signifikant wirksam angesehen. Tabelle 7 Anti-Coccidiose-Wirkung von Monensinurethanen, welche dem Futter von mit Eimeria tenella infizierten Küken zugegeben wurden. Verbindung Dosierung Durschnitt in Futter, licher In ppm fektionsgrad Uninfizierte, unbehandelte Kontrolle keine 0,0 Infizierte, unbehandelte Kontrolle keine 3,0 Monensin A, 4-Nitr-ophenylurethan 75 0,5 Monensin A, 4-Bromphenylurethan 75 0,7 Monensin A, Phenylurethan 75 0,9 Monensin A, 4-Chlorphenylurethan 65 0,8 Monensin A, 4-Methylphenylurethan 75 1,1 Monensin A, -Jodphenylurethan 125 0,1 Monensin A, 4-Fluorphenylurethan 125 1,0 Monensin A, Cyclohexylurethan 125 0,8 Die erfindungsgemässen Urethan-Derivate sind ebenfalls gegen Treponema hyodysenteriae wirksam. Die entsprechenden Mindesthemmkonzentrationen der Urethan-Derivate sind wie folgt: Verbindung Mindesthemm konzentration (mcg/ml) Monensin B, Phenäthylurethan (hergestellt durch Fermentation) 3,4-2,0 Monensin B, Phenäthylurethan (synthetisches Produkt) 2,0 Monensin A, 4-Bromphenylurethan 0,4 Monensin B, (R)-1-Phenyläthylurethan 0,4 Monensin A, Phenäthylurethan 0,4 Monensin A, Phenylurethan 0,08-0,4 Monensin A, 4-Chlorphenylurethan 0,08 Monensin B, (S)-1-Phenyläthylurethan 0,4 Monensin A, Cyclohexylurethan 24 Monensin A, 2-(Phenyl)-cyclopropylurethan 0,4 Monensin A, 4-Fluorphenylurethan 0,08 Die Versuchsmethodik zur Ermittlung von Wirksamkeit gegen Treponema hyodysenteriae, ein Erreger von Schweinedysenterie, besteht im Beimpfen von Blutagarschalen mit einer Serie von 2- oder 4-fachen Verdünnungen der Urethan-Derivate mit 10-fachen Verdünnungen des T. hyodysenteriae-Stammes. Nach 48¯stündiger Bebrütung bei 420C in einer anaeroben Atmosphäre werden die Mindesthemmkonzentrationen ermittelt als die niedrigste Konzentration einer Verbindung, welche vollständig das am stärksten verdünnte Inoculum eines jeden T. hyodysenteriae-Stammes hemmt. Die erfindungsgemässen Urethan-Derivate fördern ebenfalls das Wachstum von Widerkäuern. Durch Verabreichung der erfindungsgemässen Urethan Derivate (nachstehend das Antibiotikum11 benannt) wird Ketose verhindert bzw. geheilt; gleichzeitig wird die Futterverwertung verbessert. Die Ursache der Ketose liegt in einer rückständigen Bildung von Propionat. Eine gegenwärtig empfohlene Behandlungsmethode besteht aus Verabreichung von Propionsäure bzw. von Futtermitteln, welche bevorzugt Propionat erzeugen. Es ist offensichtlich, dass die bevorzugte Bildung von Propionat bei der Einnahme von üblichen Futtermitteln die Ketosefälle vermindern wird. Die einfachste Methode zur Verabreichung des Antibiotikums besteht darin, dass man es mit dem Tierfutter vermischt. Das Antibiotikum kann jedoch auch in anderer Weise verabreicht werden. Es kann beispielsweise zu Tabletten, Tränken, Boli oder Kapseln verarbeitet werden, welche dem Tier in dosierter Form verabreicht werden können. Formulierungen des Antibiotikums in derartigen Dosierungsformen werden nach an sich in der Veterinärpharmazie bekannten Methoden hergestellt. Kapseln werden in üblicher Weise hergestellt durch Auffüllen von Gelatinekapseln mit dem Antibiotikum in beliebiger Form. Erwünschtenfalls kann das Antibiotikum mit einem inerten festen Verdünnungsmittel verdünnt werden, wie beispielsweise mit einem Zucker, Stärke oder gereinigter kristalliner Cellulose, um das Volumen aus Zweckmässigkeitsgründen zu erhöhen. Tabletten werden durch herkömmliche pharmazeutische Methoden hergestellt. Eine Tablette enthält im allgemeinen ausser dem Wirkstoff eine Grundlage, einen Desintegrator, ein Absorbens, ein Bindemittel und ein Gleitmittel. Typische Grundlagen sind z.B. Milchzucker, feiner Puderzucker, Natriumchlorid, Stärke und Mannit. Stärke ist ebenfalls ein guter Desintegrator, wie ebenso Alginsäure. Oberflächenaktive Mittel, wie Natriumlaurylsulfat und Dioctylnatriumsulfosuccinat werden gelegentlich ebenfalls verwendet. Ueblicherweise verwendete Absorbentien sind z.B. Stärke und Milchzucker, während Magnesiumcarbonat bei öligen Substanzen Verwendung findet. Oft verwendete Bindemittel sind Gelatine, Gummi arabicum, Stärke, Dextrin und verschiedene Cellulose-Deivate. Häufig verwendete Gleitmittel sind z.B. Magnesiumstearat, Talk, Paraffinwax, verschiedene Metallseifen und Polyäthylenglykol. Das Antibiotikum kann ebenfalls in Form eines Bolus mit verzögerter Wirkung verabreicht werden. Derartige Boli werden als Tabletten hergestellt, wobei jedoch ein Mittel zur Verzögerung der Auflösung des Antibiotikums zugefügt wird. Boli sind für Freisetzung während längerer Perioden vorgesehen. Die langsame Auflösung wird durch Wahl einer stark wasserunlöslichen Form des Antibiotikums gewährleistet. Beispielsweise können Eisenfeilspähne zugegeben werden, um die Dichte des Bolus zu erhöhen, damit dieses am Boden des Pansens statisch bleibt. Auflösung des Antibiotikums wird verzögert durch Anwendung einer Matrize unlöslichen Materials, in welcher der Wirkstoff eingebettet wird. Beispielsweise können pflanzliche Waxe, gereinigte Mineralwaxe und wasserunlösliche, polymere Materialien verwendet werden. Tränke des Antibiotikums werden zweckmässig durch Wahl einer wasserlöslichen Form des Antibiotikums hergestellt. Wird eine unlösliche Form gewünscht, kann eine Suspension hergestellt werden. Wahlweise kann ein Trank als eine Lösung in einem physiologisch einwandfreien Lösungsmittel, wie beispielsweise Polyäthylenglykol, zubereitet werden. Suspensionen von unlöslichen Formen des Antibiotikums können in Nicht-Lösungsmitteln hergestellt werden, wie beispielsweise in pflanzlichen Oelen, z.B. Erdnuss-, Maisoder Sesam-Oel, in einem Glykol, wie z.B. Propylenglykol oder Polyäthylenglykol, oder in Wasser, je nach der gewählten Form des Antibiotikums. Geeignete physiologisch verträgliche Zusätze sind notwendig, um das Antibiotikum in Suspension zu halten. Die Zusätze können Verdickungsmittel sein, wie z.B. Carboxymethylcellulose, Polyvinylpyrrolidon, Gelatine oder Alginate. Verschiedene Klassen von Schaumerzeugern dienen dazu, das Antibiotikum in Suspension zu halten. Beispielsweise sind Lecithin, Alkylphenol/Polyäthylenoxid-Addukte, Naphthalinsulfonate, Alkylbenzolsulfonate und Polyoxy äthylensorbitanester für die Herstellung von Suspensionen in flüssigen Nicht-Lösungsmitteln verwendbar. Für die Herstellung von Suspensionen können zusätzlich verschiedene Substanzen, welche die Hydrophilität, Dichte und Oberflächenspannung beeinflussen, verwendet werden. Beispiele sind Silicone, Glykole, Sorbit und Zukker, die als Suspendierungsmittel Verwendung finden. Das Antibiotikum kann dem Verbraucher als eine Suspension oder als ein trockenes Gemisch mit entsprechenden Hilfsmitteln zur Verdünnung vor der Verwendung vorgelegt werden. Das Antibiotikum kann ebenfalls dem Trinkwasser des Widerkäuers zugefügt werden. Dabei wird eine wasserlösliche oder wassersuspendierbare Form des Antibiotikums dem Trinkwasser in entsprechender Menges zugegeben. Die Zubereitung des Antibiotikums für das Vermischen mit dem Trinkwasser folgt den gleichen Prinzipien wie die Formulierung von Tränken. Die zweckmässigste Art, das Tier mit dem Antibiotikum zu behandeln, basiert auf die Formulierung in das Tierfutter. Beliebige Tierfutter können dazu verwendet werden, z.B. übliche Trockenfutter, flüssige Futter und tablettierte Futter. Zur Herstellung eines medikierten Tierfutters wird üblicherweise zuvor eine konzentrierte Vormischung mit dem Antitiotikum hergestellt. Beispielsweise kann eine Vormischung von etwa 2 bis etwa 900 g Antibiotikum pro Kilogramm Vormischung enthalten. Dieser weite Bereich ist durch den benötigten, weiten Konzentrationsbereich für das fertige Futter bedingt. Vormischungen können sowohl in flüssiger als auch in fester Form vorliegen. Wie oben gezeigt, bewirkt die orale Verabreichung des Antibiotikums eine vorteilhafte Aenderung der Erzeugung von Propionat im Verhältnis zu Acetat im Pansen. Es kann deshalb postuliert werden, dass die gleiche Behandlung ebenfalls monogastrische Tiere, die faseriges Pflanzenmaterial im Blinddarm vergären, günstig beeinflussen, denn es kann erwartet werden, dass eine vorteilhafte Veränderung im Propionat/Acetatverhältni's nach oraler Gabe des Antibiotikums auftreten wird. Pferde, Schweine und Kaninchen sind Beispiele von Tieren, welche ein Teil ihres Futter durch Fermentation im Blinddarm verdauen. Bestimmung der Produktion von flüssigen Fettsäuren beim Rind Ein Rind, chirurgisch modifiziert durch eine Fistel am Pansen, wird als Quelle der Pansenflüssigkeit verwendet. Die Proben von Pansenflüssigkeit werden via einer Pansenkanüle erhalten. Das Tier wird zweimal täglich mit einer Mischung von 80 o/o Konzentrat (zur Hauptsache gelber Mais mit Zusätzen von Soyabohnenölmehl und Alfalfamehl): 20 o/o Heu gefüttert. Die Pansenflüssigkeit wird vorgängig der morgigen Fütterung genommen. Die Pansenflüssigkeit wird durch 4 Schichten Nesseltuch in einen 4 Liter Behälter gesiebt und unter Kohlendioxid aufbewahrt. 2000 ml eiskalte wässrige Pufferlösung folgender Zusammensetzung: Na2HP04 0,316 g/l MgS04 0.112 KH2P04 0,152 CaC12 0,038 NaHCO3 2,260 FeS04.7H20 0,008 NaCl 0,375 ZnSO4.7H20 0,0O'4 KCl 0,375 CuSO4.5H20 0,002 werden mit 1000 ml der oben erhaltenen Pansenflüssigkeit versetzt. Die so gepufferte Pansenflüssigkeit wird in einen 4 Liter Separiertrichter vorgelegt. Die Flüssigkeit wird mit Kohlendioxid begast, um anaerobe Bedingungen zu gewährleisten. Erlenmeyer-Kolben zu je 250 ml werden für jede Fermentation verwendet. Jeder Kolben, der mit einer Verbindung versetzt werden soll, erhält 1 g einer Mischung von fein gemahlenem 80 o/o Konzentrat: 20 o/o Alfalfa-Heu. Kolben, welche als Kontrolle verwendet werden sollen-, enthalten 1,07 g fein gemahlenes 80 o/o Konzentrat: 20 o/o Alfalfa Heu. 1 ml einer Lösung der Testsubstanz in einem geeigneten Lösungsmittel wird in jeden Kolben vorgelegt und 1/2-1 Stunde stehen gelassen. Jede Verbindung wird in Doppelproben bei einer Konzentration von 50 ppm untersucht. Lösungsmittel ohne Testverbindung wird in Kontrollkolben vorgelegt. Monensin bei 10 und 50 ppm wird als positive Kontrolle in allen Fermentationsversuchen verwendet. 80 g gepufferte Pansenflüssigkeit werden in jeden Kolben mit Testverbindung vorgelegt und 85,93 g werden den Kontrollkolben zugegeben. Die Kolben werden jeweils mit Gasauffangverschluss versehen und bei Zimmertemperatur bis zur Fertigstellung aller Kolben stehen gelassen. 6 ml Proben werden allen Kontrollkolben entnommen ("Null zeit"-Proben). Die Kolben werden in ein 380C Wasserbad vorgelegt; die Bebrütungszeit und das Aufsammeln von Gas aus der Fermentation fangen 10 Minuten später an. Die Kolben werden 4 Stunden unter Schütteln (90 pro Minute) bebrütet. Die Gasentwicklung jeder Fermentation wird in halbstündigen Intervallen gemessen. Ein dazu geeigneter Apparat wurde durch Trei et al., (J. Anim. Sci., 30, 825, 1970) beschrieben. Pansenflüssigkeit wird in 25 x 150 mm Glasröhrchen gegossen und 15 Minuten in einem Eisbad zur Abscheidung von grober Materie stehen gelassen. 2 ml 25 o/o (Gewicht pro Volumen) Methaphosphorsäure in 13 ml Centrifugenröhrchen werden mit 6 ml Pansenflüssigkeit versetzt. Jedes Röhrchen wird verschlossen und gründlich gemischt. Die Röhrchen werden in einem Eisbad 30 Minuten stehen gelassen und anschliessend 10 Minuten bei 16000 Upm centrifugiert. 4 ml der überstehenden Lösung werden anschliessend mit 1 ml internem Standard (0,25 o/o 2-Methylvaleriansäure) versetzt. Das erhaltene Gemisch wird durch ein 0,22 p Filter mit Hilfe einer 5 ml Spritze filtriert. Das Filtrat wird in 1 ml Glasröhrchen mit Teflonverschluss versiegelt. Jedes Röhrchen aus den verschiedenen Fermentationen wird in Bezug auf flüssige Fettsäuren analysiert. Die Resultate werden in der nachstehenden Tabelle festgehalten: Tabelle 8 Effekt von verschiedene Ionophoren an der Bildung von Gas und flüssigen Fettsäuren bei in vitro Pansenfermentation. EMI24.1 Testverbindung <SEP> Konzentration <SEP> Prozent <SEP> Erzeugung <SEP> im <SEP> Verhältnis <SEP> zu <tb> <SEP> der <SEP> Kontrollfermentation <tb> <SEP> Testverbindung <SEP> Total <SEP> Molverhältnis <tb> <SEP> (ppm) <SEP> flüchtige <SEP> Gaserzeugung <SEP> von <SEP> Propionat <tb> <SEP> Fettsäuren <SEP> (C3) <SEP> zu <SEP> Acetat, <tb> <SEP> + <SEP> h-Butyrat <tb> <SEP> (C2 <SEP> + <SEP> C4) <SEP> *) <tb> Monensin <SEP> B, <SEP> 10 <SEP> 157.8 <SEP> 93 <SEP> 129 <tb> Phenäthylurethan <SEP> 50 <SEP> 149.1 <SEP> 92 <SEP> 146 <tb> (hergestellt <SEP> durch <SEP> Fermentation) <tb> Monensin <SEP> A <SEP> 10 <SEP> 110.7 <SEP> 85 <SEP> 162 <tb> <SEP> 50 <SEP> 105.3 <SEP> 89 <SEP> 165 <tb> Narasin <SEP> 10 <SEP> 102.5 <SEP> 88 <SEP> 166 <tb> <SEP> 50 <SEP> 106.0 <SEP> 86 <SEP> 167 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Phenäthylurethan <SEP> 50 <SEP> 84.3 <SEP> 101.7 <SEP> 187 <tb> (hergestellt <SEP> durch <SEP> Fermentation) <tb> Mono-(4-Bromphenylurethan) <SEP> 50 <SEP> 89.9 <SEP> 103.0 <SEP> 165 <tb> von <SEP> Monensin <SEP> A <tb> Monensin <SEP> B, <SEP> 1(R)-Phenyläthyl- <SEP> 50 <SEP> 82.7 <SEP> 103.3 <SEP> 167 <tb> urethan <tb> Kontrolle <tb> *) Das Verhältnis C: (C2 + C4) wird auf einen Wert von 100 für unbehandelte Kontrolle normiert Verbindungen der Formel I, worin R2 Aryl, Halogenaryl oder Nitroaryl darstellt, und ihre pharmazeutisch verträglichen Salze sind oral wirksam als Antimalariamittel. Diese Wirksamkeit wird durch die folgenden Aktivitäten gegen den Malariaerreger Plasmodium berghei an Mäusen veranschaulicht: Verbindung EDSOmg/kg p.o. Monensin A, 4-Chlorphenylurethan 2,3 Monensin A, Phenylurethan II Monensin A, -Bromphenylurethan 15-20 Die Verbindungen der Formel I und ihre pharmazeutisch verträglichen Salze sind oral wirksam als Blutdrucksenkende Mittel. Diese Wirksamkeit wird durch die nachstehende Tabelle 9 veranschaulicht: : Tabelle 9 EMI26.1 <SEP> orale <SEP> Tag <SEP> mit <SEP> maximaler <SEP> Veränderung <SEP> (%) <SEP> Durchschnittlicher <SEP> Blutdruck <SEP> (mm <SEP> Hg) <tb> <SEP> Dosierung <SEP> Blutdruck <SEP> Herzfrequenz <SEP> vor <SEP> der <SEP> zur <SEP> Zeit <SEP> des <SEP> maxi Verbindung <SEP> (mg/kg) <SEP> Verän- <SEP> Verän- <SEP> Behandlung <SEP> malen <SEP> Effekts <tb> <SEP> Tag <SEP> derung <SEP> Tag <SEP> derung <tb> Monensin <SEP> B, <SEP> Phen- <SEP> 10 <SEP> 2 <SEP> 13 <SEP> 3 <SEP> 14 <SEP> 216 <SEP> 189 <tb> äthylurethan <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Phen- <SEP> 10 <SEP> 5 <SEP> 15 <SEP> 2 <SEP> 18 <SEP> 283 <SEP> 189 <tb> äthylurethan <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-brom- <SEP> * <SEP> 1 <SEP> 2 <SEP> 21 <SEP> - <SEP> -* <SEP> 225 <SEP> 178 <tb> phenylurethan <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Phenyl-* <SEP> 10 <SEP> 2 <SEP> 26 <SEP> - <SEP> -* <SEP> 229 <SEP> 1170 <tb> urethan <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Chlor- <SEP> 1 <SEP> 5 <SEP> 20 <SEP> 5 <SEP> 19 <SEP> 224 <SEP> 179 <tb> phenylurethan <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Fluor-* <SEP> 3 <SEP> 2 <SEP> 17 <SEP> - <SEP> -* <SEP> 220 <SEP> 182 <tb> phenylurethan <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Methyl- <SEP> 1 <SEP> 3 <SEP> 16 <SEP> 4 <SEP> 15 <SEP> 217 <SEP> 182 <tb> phenylurethan <tb> + Verbindungen, welche den Blutdruck, jedoch nicht die Herzfrequnze beeinflussen, sind bevorzugt. Die erfindungsgemässen Verbindungen können hergestellt werden durch Umsetzung von Monensin A oder B, d.h. eine Verbindung der allgemeinen Formel EMI27.1 worin R2 Methyl, (Monensin B) oder Aethyl (Monen sin A) darstellt oder ein Salz davon mit einem Isocyanat der Formel R1-NCO III worin R 1 die oben gegebene Bedeutung hat. Bevorzugt wird ein Salz der Ausgangsverbindung der Formel II verwendet, insbesondere das Natriumsalz. Das Isocyanat der Formel III wird vorzugsweise in leichtem, beispielsweise etwa 10 o/oigem Ueberschuss zugegeben, um die Bildung von Monoderivat zu optimieren. Die Uetgung wird vorzugsweise in einem inerten Lösungsmittel durchgeführt, wie beispielsweiseeinenchlorierten Kohlenwasserstoff, z.B. Tetrachlorkohlenstoff, Methylenchlorid oder Chloroform; Diäthyläther, Aethylacetat, oder in einem aromatischen Kohlenwasserstoff-Lösungsmittel, wie Benzol oder Toluol. Die Reaktionstemperatur ist nicht kritisch, sie liegt jedoch zwischen etwa 0 C und dem Siedepunkt des Reaktionsgemisches, vorzugsweise bei etwa Zimmertem- peratur. Beispiel 1 Schüttelkolbengärung mit Streptomyces X-14667 Der Mikroorganismus X-14667 wird auf einer Stärke Agarschrägkultur folgender Zusammensetzung (g/l in destilliertem Wasser) gezüchtet und aufbewahrt: Stärke 10,0 N-Z Amin A 2,0 Fleischextrakt 1,0 Hefeextrakt 1,0 CoCl2.6H20 0,02 Agar 10,0 Die Schrägkultur wird mit dem Mikroorganismus X-14667 beimpft und bei 280C 7 bis 14 Tage bebrütet. Ein Teil des Agars mit der sporulierten Kultur wird zur Beimpfung eines 500-ml Erlenmeyerkolbens mit 100 ml sterilisiertem Impfsubstrat folgender Zusammensetzung ( & l in destilliertem Wasser) verwendet: Tomatenmark 5,0 getrocknete Rückstände aus der Brennerei 5,0 Pepton 5,0 entbitterte Hefe 5,0 Maisstärke 20,0 CaC03 1,0 K2HP04 1,0 Der pH-Wert wird vor der Sterilisierung mit wässriger Natriumhydroxidlösung auf 7 eingestellt. Die beimpfte Nährlösung wird bei 280C 48 bis 72 Stunden auf einer Schüttelmaschine (250 Upm; 5 cm Ausschlag) bebrütet. Eine 3 ml Portion (3 o/o, V/V) der erhaltenen Kultur wird zur Beimpfung eines 500-ml Erlenmeyerkolbens mit 100 ml sterilisiertem Nährmedium folgender Zusammensetzung (g/l in destilliertem Wasser) verwendet: Tomatenmark 5,0 getrocknete Rückstände aus der Brennerei 5,0 Pepton 5,0 entbitterte Hefe 5,0 Maisstärke 20,0 CaCO3 1,0 K2HP04 1,0 Der pH-Wert wird vor dem Autoklavieren mit wässriger Natriumhydroxidlösung auf 7,0 eingestellt. Die beimpfte Nährlösung wird bei 280C 5 Tage aut einer Schüttelmaschine (250 Upm; 5 cm Ausschlag) bebrü- tet. Beispiel 2 Tankgärung mit Streptomyces X-14667 Der Mikroorganismus X-14667 wird auf einer Stärke Casein-Agarschrägkultur folgender Zusammensetzung (g/l) gezüchtet und aufbewahrt. Lösliche Stärke 5,0 Casein 1,0 K2HP04 0,5 MgS04 (wasserfrei) 0,5 Agar 20,0 Der pH-Wert wird vor dem Autoklavieren mit wässriger Natriumhydroxidlösung auf 7,4 eingestellt. Die Schrägkultur wird mit dem Mikroorganismus X-14667 beimpft und bei 280C 7 bis 10 Tage bebrütet. Ein Teil des Agars mit der sporulierten Kultur wird zur Beimpfung eines 500-ml Erlenmeyerkolbens mit 100 ml Impfsubstrat folgender Zusammensetzung (g/l in destilliertem Wasser verwendet: Tomatenmark 5,0 getrocknete Rückstände aus der Brennerei ,0 Pepton 5,0 entbitterte Hefe i,0 Maisstärke 20,0 CaCO3 1,0 K2HPO4 1,0 Der pH-Wert wird vor dem Autoklavieren auf 7,0 eingestellt. Die beimpfte Nährlösung wird 96 Stunden bei 280C auf einer Schüttelmaschine (250 Upm; 5 cm Ausschlag) bebrütet. 20 ml (1 o/o V/V) dieser Kultur wird zur Beimpfung eines 6 Liter Erlenmeyerkolbens mit 2 Liter Nährlösung folgender Zusammensetzung (g/l in destilliertem Wasser) verwendet: Tomatenmark 5,0 getrocknete Rückstände aus der Brennerei 5,0 Pepton 5,0 entbitterte Hefe 5,0 Maisstärke 20,0 CaCO3 1,0 K2HP04 1,0 Der pH-Wert wird auf 7,0 eingestellt; anschliessend wird 4 Minuten bei 1 bis 1 1/2 kg/cm2 autoklaviert. Die beimpfte Nährlösung wird bei 280C 72 Stunden auf einer Schüttelmaschine (250 Upm; 5 cm Ausschlag) bebebrütet Eine 6 Liter Portion der erhaltenen Kultur wird zur Beimpfung von 230 Liter Nährmedium folgender Zusammen¯ setzung (g/l in destilliertem Wasser) in einem 380 Liter Fermenter verwendet: Tomatenmark 5,0 getrocknete Rückstände aus der Brennerei 5,0 Pepton 5,0 entbitterte Hefe 5,0 Maisstärke 20,0 CaCO3 1,0 K2HPO4 Schaumbekämpfungsmittel 0,1 Der pH-Wert wird mit wässriger Natriumhydroxidlö- sung auf 7,0 eingestellt; anschliessend wird 1 1/4 Stunden mit Dampf von 4 kg/cmê stelirilisiert. Das beimpfte Medium wird mit Druckluft von einer Geschwindigkeit von 9 Liter pro Minute belüftet und mit einem Rührwerk (280 Upm) gerührt. Die Gärung wird bei 280C 5 Tage durchgeführt. Beispiel 3 Isolierung von Monensin A, Monensin B und Diphenäthylharnstoff Die gesamte Brühe aus einer 230 Liter Gärung von Streptomyces sp. X-14667 wird bei pH 7,6 mit dem gleichen Volumen Aethylacetat extrahiert. Die Lösungsmittelschicht wird abgetrennt und unter vermindertem Druck auf 1,0 Liter konzentriert. Das Lösungsmittelkonzentrat wird nacheinander mit gleichen Volumen von 1N wässriger Salzsäure, Wasser, gesättigter wässriger Natriumcarbonatlösung und Wasser gewaschen und anschliessend über Natriumsulfat getrocknet. Nach weiterer Konzentrierung und Filtration erhält man eine kristalline Mischung, welche Monensin A, Monensin B, Diphenäthylharnstoff sowie ein Oel enthält. Beispiel 4 Isolierung von Monensin A und Diphenäthylharnstoff Die nach Beispiel 3 erhaltenen Mischkristalle werden in 100 ml Methylenchlorid gelöst und mit lN wässriger Salzsäure gewaschen. Die Lösungsmittelphase wird auf ein kleines Volumen eingedampft. Nach Zugabe von n-Hexan wird Diphenäthylharnstoff (sp. 1360C) durch Filtration abgetrennt. Das Filtrat (Mutterlauge) wird mit Diäthyläther verdünnt und mit gesättigter, wässriger Natriumcarbonatlösung gewaschen. Nach dem Konzentrieren und der Zugabe von n Hexan wird kristallines Monensin B (Fp. 2760C) abgetrennt; eine zweite Kristallernte wird ebenfalls abgetrennt. Durch wiederholte Dünnschichtchromatographie an Kieselgel (mit Aethylacetat als Lösungsmittel) wird festgestellt, dass die zweite Kristallernte eine Mischung von Monensin B und Monensin A darstellt. Beispiel 5 Isolierung von Monensin A Phenäthylurethan und Monensin B Phenäthylurethan Das Oel aus der ersten Filtration (Beispiel 3) wird in n-Hexan (0,47 Liter) gelöst und 2-mal mit 0,47 Liter Acetonitril extrahiert. Die Extrakte werden vereinigt, zu einem Oel konzentriert und mit n-Hexan gewaschen. Der in n-Hexan unlösliche, ölige Feststoff wird in Diäthyl äther gelöst, filtriert und an 500 g Kieselgel chromato- graphiert, wobei als Eluierungsmittel ein Gradient zwischen h Liter Methylenchlorid und 5 Liter Methylenchlorid äthanol (9:1) verwendet wird. Es werden Fraktionen zu je etwa 18 ml gesammelt; die Fraktionen 120 bis 180 werden zur wiederholten Chromatographie vereinigt. Die Fraktionen 185 bis 235 werden vereinigt, unter vermindertem Druck zu einem öligen Feststoff konzentriert, in Diäthyläther gelöst und nacheinander mit 1N wässriger Salzsäure, gesättigter wässriger Natriumcarbonatlösung und Wasser gewaschen. Das Lösungsmittel wird unter vermindertem Druck eingedampft; man erhält das Natriumsalz von Monensin B Phenäthylurethan als ein Pulver, Fp. 700C; dazu + 480 (CHCl3, C=1 o/o), + 440 (CH30H, C = 1 o/o). Elementaranalyse: Ber.: C44H68N012Na (826.98): C, 63,90; H, 8,41; N, 1,69; Na, 2,78. Gef. C, 64,45; H, 8,68; N, 1,76; Na, 2,31. 200 ml des Natriumsalzes von Monensin B Phenäthylurethanwerdenin Aethylacetat gelöst und mit 1N wässriger Salzsäure gewaschen. Das Lösungsmittel wird unter verminertem Druck eingedampft. Man erhält 100 g Monen sin B Phenäthylurethan als ein beigefarbenes Pulver, Fp. 500C [al + 59,60 (CHC13, C=1 o/o); + 45,80 (CH3OH, C= 1 o/o). Elementaranalyse: Ber.: C44H69N012 (804,4): C, 65,65; H, 8,76; N, 1,74; O, 23,85. Gef.: C, 65,53; H, 8,16; N, 1,49; O, 24,16. Die vereinigten Fraktionen 120 bis 180 werden unter vermindertem Druck zu einem Oel konzentriert und an einer 700 g Kieselgelkolonne umchromatographiert. Die Kolonne wird anfänglich mit 4 Liter Aethylacetat eluiert, anschliessend mit 4 Liter Aethylacetat/Aceton (1:1) und schliesslich mit 4 Liter Aethylacetat/Aethanol (95:1). Die vereinigten Fraktionen 29 bis 35 liefern nach dem Konzentrieren Diphenylharnstoff. Die vereinigten Fraktionen 86 bis 121 liefern nach dem Abdampfen des Lösungsmittels 2 g Monensin B Phenäthylurethan. Die vereinigten Fraktionen 55 bis 85 werden unter verminertem Druck zu einem öligen Feststoff konzentriert und mit Hilfe von n-Hexan/Aceton (8:2) umchromatographiert. Die Zweikomponenten-Mischung wird in Monensin B Phenäthylurethan und Monensin A 2-Phenyläthylurethan aufgetrennt, letzteres als ein Pulver nach dem Eindampfen des Lösungsmittels, Fp. 103 C [&alpha;]D + 500 (CHCl3, C=1 o/o). Elementaranalyse: Ber. C45H70N012Na (840,04); C, 6d,34; H, 8,40; N, 1,67; Na, 2,73. Gef. C, 64,43; H, 8,29; N, 1,92; Na, 2,49. Die oben angegebenen Strukturen der Endprodukte werden durch Synthese aus Monensin A bzw. B bestätigt. Das halbsynthetische Material wird in beiden Fällen hergestellt durch Auflösung von 1 mMol des Antibiotikums in Benzol und Zugabe von 1,2 mMol Phenäthylisocyanat. Nach 12stündiger Reaktion werden die Endprodukte durch Waschen des Reaktionsgemisches mit wässriger Natriumcarbonatlösung und Abdampfen des Lösungsmittel unter vermindertem Druck aufgearbeitet. Die erhaltenen rohen Endprodukte werden durch Chromatographie an Kieselgel( wie für die Fermentations-Endprodukte beschrieben, gereinigt. Die halbsynthetische und durch Fermentation erhaltenen Produkt te zeigten sich durch Schmelzpunkt, IUID, IR, NMR und MS als identisch. Das in der obigen Reaktion verwendete Phenäthyliso cyanat kann wie folgt hergestellt werden: 40 g Phenäthylamin in 300 ml trockenem, mit tr°;kew nem Chlorwasserstoffgas gesättigtem Toluol werten big zum Auftreten eines schweren weissen Niederschlages gemischt. Zusätzlich werden 200 ml trockenes Toluol mit 50 ml Phosgen (12,5 o/o in Benzol) hinzugefügt. Das Ge- misch wird 10 Minuten unter Rückflussbedingungen erhitzt; anschliessend werden 450 ml Phosgen langsam innerhalb 30 Minuten hinzugefügt und das erhaltene Gemisch 4 Stunden unter Rückflussbedingungen erhitzt. Das Reaktionsge- misch wird langsam auf Zimmertemperatur gekühlt wnd das Lösungsmittel unter vermindertem Druck entfernt, wonach ein gelbes Oel erhalten wird. Nach Destillation dieser Oels bei 820 bis 830C/0,1 mm erhält man 1,8 g Phenäthyl- isocyanat. Beispiel 6 Herstellung des 4-Bromphenylurethans von Monensi n A aus Monensin A (freie Säure) 10 mMol (6,89 g) Monensin A-Hydrat werden in 100 ml Benzol gelöst. Diese Lösung wird mit einem Ueberschuss (11 mMol) 4-Bromphenylisocyanat im gleichen Volumen Benzol versetzt und das Reaktionsgemisch bei Zimmertemperatur gerührt. Die Reaktion wird durch Dünnschichtchromatographie an Kieselgel mit Aethylacetat-n-Hexan-Aethanol (80:20:2) als Lösungsmittel und Vanillin-Phosphorsäure als Entwickler verfolgt. Nach einer Woche wird das Reaktionsgemisch nacheinander mit 0,5N wässriger Salzsäure, Wasser, gesättigter wässriger Natriumcarbonatlösung und Wasser gewaschen. Die Benzollösung wird über Natriumsulfat getrocknet und unter vermindertem Druck zu einem amorphen Feststoff eingedampft. Nach dem Kristallisieren aus Acetonitril erhält man das Natriumsalz des 4-Bromphenylurethans von Monensin A, Fp. 2010 bis 2030C c'1D + 65,30 (CHCl3, C=1 o/o). Elementaranalyse: Ber. für C3 H66012NBrNa (891,87) o/o C, 57,90; H, 7,46; N, 1,57; Br, 8,96. Gef. o/oC, 58,57; H, 7,36; N, 1,23; Br, 8,90. Beispiel 7 Herstellung des 4-Bromphenylurethans von Monensin A aus dem Natriumsalz von Monensin Ausgehend von 5 g Natriumsalz von Monensin A (7 mMol) und 2 g 4-Bromphenylisocyanat lässt man die Reaktion wie gemäss Beispiel 6 laufen, jedoch scheint das Natriumsalz schneller zu reagieren. Gemäss Dünnschichtchromatogramm scheint die Reaktion nach 2 Tagen vollendet zu sein. Nach dem Aufarbeiten in oben angegebener Weise erhält man das 4-Bromphenylurethan von Monensin A. Beispiel 8 In der gleichen Weise wie in den Beispielen 6 und 7 angegeben erhält man durch Verwendung des entsprechen- den Isocyanats folgende Verbindungen: X EMI37.1 <tb> <SEP> Verbindung <SEP> Schmelzpunkt C <SEP> optische <SEP> Drehung <SEP> &alpha; ;D,0 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Methylurethan <SEP> 191-193 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Bromphenäthyl <tb> urethan <SEP> 1 <SEP> 201-203 <SEP> <tb> Monensin <SEP> B, <SEP> (R)-l-Phenyl <tb> äthylurethan <SEP> 89-93 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Phenylurethan <SEP> 199-210 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Chlor <SEP> phenyl <tb> urethan <SEP> 199-207 <tb> Monensin <SEP> B, <SEP> (S)-1-Phenyl <tb> äthylurethan <SEP> 116-120 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> Cyclohexyl <tb> urethan <SEP> 110-123 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 2-(phenyl)-cyclo <tb> propylurethan <SEP> 119-124 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Fluorphenyl <tb> urethan <SEP> 199-223 <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Nitrophenyl <tb> urethan <SEP> 189-192 <SEP> + <SEP> 104.7(1%,CH3CN) <SEP> <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Methylphenyl <tb> urethan <SEP> 220 <SEP> + <SEP> 59.6(1%,CHCl3) <SEP> <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Jodphenyl <tb> urethan <SEP> 203-206 <SEP> + <SEP> 67.6(1%,CHCl3) <SEP> <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> n-Butylurethan <SEP> + <SEP> 59.2(1%,CHCl3) <tb> Monensin <SEP> A, <SEP> 4-Phenoxyphenyl <tb> urethan <SEP> 210-213 <SEP> + <SEP> 67.9(1%,CHCl3) <SEP> <tb> Beispiel 9 HERSTELLUNG VON TABLETTEN (Nassgranulierung) Bestandteile mg/Tablette mg/Tablette mg/Tablette 1. Monensin B 15 30 60 Phenäthylurethan oder Monensin A Phenäthylurethan 2. Milchzucker 188 173 188 3. modifizierte Stärke 25 25 30 4. vorgelatinierte Stärke 20 20 20 destilliertes Wasser q.s. 6. Magnesiumstearat 2 2 2 Gewicht einer Tablette 250 mg 250 mg 300 mg PROZEDERE: 1) No. 1-4 werden in einem geeigneten Mixer gemischt. 2) Das erhaltene Gemisch wird mit genügend destillier tem Wasser granuliert und anschliessend gemahlen. 3) Das Mahlgut wird in einem Ofen getrocknet. 4) Das getrocknete Produkt wird gemahlen und mit Mag nesiumstearat vermischt. 5) Das erhaltene Produkt wird 3 Minuten in einer Tab lettierungsmaschine komprimiert. Beispiel 10 TABLETTEN (Direkte Kompression) Bestandteile mg/Tablette mg/Tablette mg/Tablette 1. Monensin B 15 30 60 Phenäthylurethan oder Monensin A Phenäthylurethan 2. Milchzucker 207 192 162 3. Avicel 45 45 45 4. Stärke für 30 30 30 direkte Kompression 5. Magnesiumstearat 3 3 3 Gewicht einer Tablette 300 mg 300 mg 300 mg PROZEDERE: 1) No. 1 wird mit der gleichen Menge Milchzucker gut vermischt. 2) Diese Mischung wird mit No. 3, 4 und dem restlichen Milchzucker gut vermischt. 3) Das Magnesiumstearat wird hinzugefügt und das Ganze 3 Minuten gemischt. 4) Das erhaltene Produkt wird an einer Tablettierungs maschine komprimiert. Beispiel 11 KAPSELN Bestandteile mg/Kapsel mg/Kapsel mg/Kapsel 1. Monensin B 15 30 60 Phenothylurethan oder Monensin A Phenäthylurethan 2. Milchzucker 239 224 194 3. Stärke 30 30 30 4. Talk 15 15 15 5. Magnesiumstearat 1 1 1 Kapselfüllgewicht 300 mg 300 mg 300 mg PROZEDERE: 1) No. 1-3 werden in einem geeigneten Mixer gemischt. 2) Talk und Magnesiumstearat werden hinzugefügt und das Ganze kurz gemischt. 3) Das erhaltene Produkt wird in einer entsprechenden Maschine in Kapseln abgefüllt. Beispiel 12 Ein Tier futter zur Verwendung gemäss der Erfindung hat z.B. folgende Zusammensetzung: Gewichtsprozent Gewichtsprozent auf Basis der Trockensub stanz Maissilofutter 21,6 10,7 Gewalzter Trockenmais 70,7 80,0 Proteinzusatz 7,7 9,3 Proteinzusatz Alfalfa Heu 15,49 Gewalztes Trockenkorn von Sorghum 3,72 Beumwollsamenmehl 63,56 Kalkstein Salz (NaCl) 3,40 Spurenmineral i en 0, 11 Vitamin A Vormischung 0,13 KCl 4,36 Monensin A Phenäthylurethan Vormischung (15 Gewichtsprozent) 0,26 100,0 Monensin A Phenäthylurethan Vormischung Monensin A Phenäthylurethan 15 Re i ssamenhülsen 85

Claims: Patentansprüche 1. Urethan-Derivate der allgemeinen Formel EMI42.1 in der R1 Aryl, Alkylaryl, Halogenaryl, Nitroaryl, Alkoxyaryl, Aryloxyaryl, Acylaryl, Alkyl, Cycloalkyl, Arylalkyl, Halogenarylalkyl oder Arylcycloalkyl und R2 Methyl oder Aethyl darstellen, und ihre pharmazeutisch verträglichen Salze. 2. Eine Verbindung gemäss Anspruch 1, worin R1 Aryl, Alkylaryl, Halogenaryl, Nitroaryl, Alkoxyaryl, Aryloxyaryl, Acylaryl oder Cycloalkyl darstellt. 3. Eine Verbindung gemäss Anspruch 1, worin R1 Aryl, Alkylaryl oder Halogenaryl darstellt. 4. Eine Verbindung gemäss einem der Ansprüche 1-3, worin R2 Aethyl darstellt. 5. Eine Verbindung gemäss einem der Ansprüche 1-4, worin R1 Phenyl oder Halogenphenyl darstellt. 6. Eine Verbindung gemäss Anspruch 5, worin R1 Phenyl und R2 Aethyl darstellen. 7. Eine Verbindung gemäss Anspruch 5, worin R1 4-Chlorphenyl und R2 Aethyl darstellen. 8. Eine Verbindung gemäss Anspruch S, worin R1 4-Bromphenyl und R2 Aethyl darstellen. 9. Eine Verbindung gemäss Anspruch 5, worin R1 4-Fluorphenyl und Rê Aethyl darstellen. 10. Eine Verbindung gemäss Anspruch 5, wortn 4-Nitrophenyl und R2 Aethyl darstellen. 11. Eine Verbindung gemäss Anspruch 1 oder 4, worin R Phenäthyl darstellt. 12. Verbindungen gemäss einem der Ansprüche 1-11, als pharmazeutische Wirkstoffe. 13. Verbindungen gemäss einem der Ansprüche 1-11, als pharmazeutische Wirkstoffe zur Behandlung und Prophylaxe von bakteriellen Krankheiten, Coccidiose, erhöhtem Blutdruck, Malaria und/oder Schweinedysenterie. 14. Verbindungen gemäss einem der Ansprüche 1-11, als Mittel zur Erhöhung des Futternutzeffektes bei Wiederkäuern und bei monogastrischen Tieren, die faseriges Eflanzenmaterial im Blinddarm vergären. 15. Verfahren zur Herstellung der Urethan-Derivate gemäss einem der Ansprüche 1-11, dadurch gekennzeichnet, dass man eine Verbindung der Formel EMI45.1 in der R2 Methyl oder Aethyl darstellt mit einem Isocyanat der allgemeinen Formel R -NCO III in der R1 die in Anspruch 1 gegebene Bedeutung hat, umsetzt. 16. Verfahren nach Anspruch 15, dadurch gekennzeich net, dass man das Isocyanat der Formel III in leichtem, beispielsweise etwa 10 o/oigem Ueberschuss zugibt. 17. Verfahren zur Herstellung der Verbindungen gemäss Anspruch 11, d.h. worin R1 Phenäthyl darstellt, dadurch gekennzeichnet, dass man eine Subkultur einer der Stämme Streptomyces sp. X-14667 NRRL 11336 (ATCC 31551), strepto- myces sp. X-14573 NRRL 11337 (ATCC 31552) und Streptomy ces sp. X-14575 NRRL 11338 (ATCC 31553) in einer Kohlenhydrate und stickstoffhaltige Nährstoffe enthaltenden wässrigen Lösung unter submersen aeroben Bedingungen kulti- viert und anschliessend das Endprodukt aus der Lösung isoliert. 18. Pharmazeutische Präparate, gekennzeichnet durch einen Gehalt an einer Verbindung gemäss einem der Ansprüche 1-11. 19. Pharmazeutische Präparate zur Behandlung und Prophylaxe von bakteriellen Krankheiten, Coccidiose, erhöhtem Blutdruck, Malaria und/oder Schweinedysenterie, gekennzeichnet durch einen Gehalt an einer Verbindung gemäss einem der Ansprüche 1-11. 20. Vormischung oder Komposition zum unmittelbaren Verbrauch und zur Erhöhung des Futternutzeffektes bei Wiederkäuern und bei monogastrischen Tieren, die faseriges Pflanzenmaterial im Blinddarm vergären, gekennzeichnet durch einen Gehalt an einer Verbindung gemäss einem der Ansprüche 1-11. 21. Verwendung der Verbindungen gemäss einem der Ansprüche 1-11 zur Behandlung und Prophylaxe von Krankheiten. 22. Verwendung der Verbindungen gemäss einem der Ansprüche 1-11 zur Behandlung und Prophylaxe von bakteriellen Krankheiten, Coccidiose, erhöhtem Blutdruck, Ha- laria und/oder Schweinedysenterie. 23. Verwendung der Verbindungen gemäss einem der Ansprüche 1-11 zur Erhöhung des Futternutzeffektes bei Wiederkäuern und bei monogastrischen Tieren, die faseri- ges Pflanzenmaterial im Blinddarm vergären. Patentansprüche "für Oesterreich" 1. Verfahren zur Herstellung von Urethan-Derivaten der allgemeinen Formel EMI48.1 in der R Aryl, Alkylaryl, Halogenaryl, Nitroaryl, Alkoxyaryl, Aryloxyaryl, Acylaryl, Alkyl, Cycloalkyl, Arylalkyl, Halogenarylalkyl oder Arylcycloalkyl und Rê Methyl oder Aethyl darstellen, und ihre pharmazeutisch verträglichen Salze, dadurch gekennzeichnet, dass man eine Verbindung der Formel EMI48.2 in der R2 Methyl oder Aethyl darstellt, mit einem Isocyanat der Formel R1-NCO III in der R1 die oben gegebene Bedeutung hat umsetzt. 2. Verfahren nach Anspruch 1 zur Herstellung uon Verbindungen, worin R1 Aryl, Alkylaryl, Halogenaryl, Nitroaryl, Alkoxyaryl, Aryloxyaryl, Acylaryl oder Cyclot aryl darstellt, dadurch gekennzeichnet, dass man ein entsprechend substituiertes Isocyanat der Formel III verwendet. 3. Verfahren nach Anspruch 1 zur Herstellung von Verbindungen, worin R Aryl, Alkylaryl oder HalogEnaryl darstellt, dadurch gekennzeichnet, dass man ein entsprechend substituiertes Isocyanat der Formel III verwendet. 4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-3 zur Herstellung von Verbindungen, worin R2 Aethyl darstellt, dadurch gekennzeichnet, dass man eine entsprechend substituierte Ausgangsverbindung der Formel II einsetzt. 5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1¯l zr Herstellung von Verbindungen, worin R Phenyl oder Halogenphenyl darstellt, dadurch gekennzeichnet, dass man ein entsprechend substituiertes Isocyanat der Formel III einsetzt. 6. Verfahren nach Anspruch 5 zur Herstellung von Verbindungen, worin R1 Phenyl und R2 Aethyl darstellen, dadurch gekennzeichnet, dass man entsprechend substituierte Ausgangsverbindungen der Formeln II und III einsetzt. 7. Verfahren nach Anspruch 5 zur Herstellung von Verbindungen, worin R 4-Chlorphenyl und R Aethyl darstellen, dadurch gekennzeichnet, dass man entsprechend substituierte Ausgangsverbindungen der Formeln II und III einsetzt. 8. Verfahren nach Anspruch 5 zur Herstellung von Verbindungen, worin R1 4-Bromphenyl und R2 Aethyl darstellen, dadurch gekennzeichnet, dass man entsprethend substituierte Ausgangsverbindungen der Formeln II und III einsetzt. 9. Verfahren nach Anspruch 5 zur Herstellung von Verbindungen, worin R 4-Fluorphenyl und R2 Aethyl darstellen, dadurch gekennzeichnet, dass man entsprechend substituierte Ausgangsverbindungen der Formeln II und III einsetzt. 10. Verfahren nach Anspruch 5 zur Herstellung von worin R1 2 Verbindungen, worin R 4-Nitrophenyl und R Aethyl darstellen, dadurch gekennzeichnet, dass man entsprechend substituierte Ausgangsverbindungen der Formeln II und III einsetzt. 11. Verfahren nach Anspruch 1 oder 4 zur Herstellung von Verbindungen, worin R1 Phenäthyl darstellt, dadurch gekennzeichnet, dass man eine entsprechend substituierte Ausgangsverbindung der Formel II einsetzt. 12. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-11, dadurch gekennzeichnet, dass man das Isocyanat der Formel III in leichtem, beispielsweise etwa 10 o/oigem Ueberschuss zusetzt. 13. Verfahren nach Anspruch 1 oder 4 zur Herstellung von Verbindungen worin R Phenäthyl darstellt, dadurch gekennzeichnet, dass man eine Subkultur einer der Stämme Streptomyces sp. X-14667 NRRL 11336 (ATCC 31551), Streptomyces sp. X-14573 NRRL 11337 (ATCC 31552) und Streptomyces sp. X-14575 NRRL 11338 (ATCC 31553) in einer Kohlenhydrate und stickstoffhaltige Nährstoffe enthaltenden wässrigen Lösung unter submersen aeroben Bedingungen kultiviert und anschliessend das Endprodukt aus der Lösung isoliert.

Inventors: LIU, CHAO-MIN, WESTLEY, JOHN
Applicants: F. HOFFMANN-LA ROCHE & CO. AKTIENGESELLSCHAFT
Application year: 1979
Main classification: C07D493
IPC codes: A23K1, C12P17, C07H19, C12P19