Instructivo para la Vigilancia de la

Tuberculosis Bovina en Vida Silvestre

Febrero 2012
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Índice

Prefacio ..............................................................................................................................................4

I. Introducción..................................................................................................................................4

A. Propósito ................................................................................................................................4

 Detección de TB ...............................................................................................................5

 Contenido del Manual........................................................................................................5

B. TB bovina...............................................................................................................................5

II. Estrategias de Vigilancia y Recolección de Muestras..................................................................6

A. Estrategias para la Identificación de Animales para Muestreo..............................................6

 Especies Objetivo..............................................................................................................6

 Pasos de Muestreo.............................................................................................................9

 Tamaños de las Muestras..................................................................................................9

 Calculador del Tamaño de la Muestra ............................................................................10

 Selección de Áreas Geográficas para Muestreo..............................................................11

 B. Suministros...........................................................................................................................11

 Suministros de Muestreo.................................................................................................11

 Herramientas de Necropsia .............................................................................................12

 Suministros para la Recolección de Sangre ....................................................................12

 Otros Suministros............................................................................................................12

 C. Lineamientos del Equipo de Seguridad y Protección Personal............................................13

 Recomendaciones para Biólogos y Veterinarios a Cargo de la Vida Silvestre .............13

 Equipo de Seguridad y Protección Personal (EPP).........................................................13

 Manejo de Substancias Dañinas .....................................................................................14

 Desecho de Cadáveres y Desinfectantes.........................................................................14

 Desecho de Guantes y Residuos Relacionados con las Muestras...................................15

 D. Recolección de Especímenes...............................................................................................15

 Recommendaciones Generales .......................................................................................15

 Recolección y Almacenamiento de Muestras.................................................................16

 Muestras para Recolectar................................................................................................16

 Cuando Utilizar Formalina, Bolsas Whirl-Paks®, y/o Borato de Sodio ........................16

 Nódulos Linfáticos en Cabeza y Tejidos........................................................................17

 Nódulos Linfáticos Torácicos y Tejidos.........................................................................17

 Nódulos Linfáticos en la Cavidad Abdominal................................................................17

 Recolección de Lesiones o Tejido Anormal ...................................................................18

 Selección y Preservación de Tejidos...............................................................................18

 Recolección de Sangre....................................................................................................20

 Adecuado Etiquetado de las Muestras............................................................................21

 Envío de Muestras al NVSL ...........................................................................................22

 Comunicaciones Cuando se Envían las Muestras a NVSL ............................................22

 Reporte de los Resultados...............................................................................................22

 E. Instrucciones para las Hojas de Datos de Vigilancia de TB en Vida Silvestre ...................23

III. Análisis de Muestras.................................................................................................................24

 A. Histopatología ....................................................................................................................24

 B. Reacción en Cadena de la Polimerasa.................................................................................24

 C. Cultivo Micobacteriológico.................................................................................................25

IV. Manejo de Datos........................................................................................................................25 
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A. Visión General ....................................................................................................................25

B. Ingreso de Datos y Responsabilidades................................................................................25

 C. Mapeo de Datos y Reporte ..................................................................................................25 

Reconocimientos..............................................................................................................................26

Apéndices.............................................................................................................................................

 Apéndice A: Contactos Nacionales de Vigilancia de TB en la Vida Silvestre...................A1

 Apéndice B: MSDS para Formalina Amortiguada al 10%.................................................B1

 Apéndice C: MSDS para Borato de Sodio..........................................................................C1

 Apéndice D: Necropsia de un Mapache..............................................................................D1

 Apéndice E: Necropsia de un Venado y Otro Cérvidos ..................................................... E1

 Apéndice F: Necropsia de un Coyote ..................................................................................F1

 Apéndice G: Necropsia de una Zarigüeya ..........................................................................G1

 Apéndice H: Necropsia de un Jabalí...................................................................................H1

 Apéndice I: Lesiones de TB por Especie............................................................................. I1

 Apéndice J: Ejemplo de Hoja de Datos de Vigilancia de TB en Vida Silvestre .................J1

 Apéndice K: Ejemplo de la Forma10-4 ..............................................................................K1

 
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Prefacio

Las siguientes recomendaciones fueron desarrolladas para proporcionar orientación a las 

instituciones estatales y federales de servicios de vida silvestre que planeen llevar a cabo la 

vigilancia de tuberculosis (TB) bovina en vida silvestre—específicamente en áreas donde la 

detección reciente de TB se encuentra en ganado lechero o de carne, o en rebaños de cérvidos 

cautivos. 

Estas recomendaciones deberán ser utilizadas como un recurso durante el desarrollo de una 

estrategia de vigilancia de la enfermedad de TB en vida silvestre para el muestreo de la vida 

silvestre. No conlleva la intención de determinar la prevalencia de la enfermedad en 

poblaciones silvestres. Adicionalmente, los procedimientos y otra información proporcionada 

en este manual no son obligatorios. Las prácticas ganaderas específicas para minimizar las 

interacciones entre el ganado y la vida silvestre son métodos efectivos para prevenir 

infecciones; sin embargo, no se contemplan dichos métodos en este manual. En lugar de ello, 

los lineamientos se concentran específicamente en estrategias de vigilancia de la vida silvestre 

para la detección de TB bovina. 

Instructivo para la Vigilancia de Tuberculosis Bovina en Vida Silvestre fue desarrollado por el 

Servicio de Inspección Sanitaria de Animales y Plantas (APHIS, por sus siglas en inglés), en 

colaboración con profesionales con experiencia en TB bovina. Estas recomendaciones 

incorporan la más reciente literatura científica y fungen como un punto de inicio para el 

desarrollo y la ejecución de la vigilancia para la TB bovina en áreas geográficas donde la 

presencia de enfermedades en vida silvestre es desconocida. Se recomienda ampliamente la 

cooperación entre aquellos organismos enfocados en la vida silvestre, otros cooperadores 

estatales, propietarios, y Servicios de Vida Silvestre de APHIS (WS, por sus siglas en inglés) y 

los Servicios Veterinarios (VS, por sus siglas en inglés) para desarrollar un plan de vigilancia 

efectivo en un área específica. Adicionalmente, también se recomienda la coordinación con los 

Laboratorios Nacionales de Servicios Veterinarios (NVSL, por sus siglas en inglés) en Ames, 

Iowa, antes del muestreo para garantizar que las muestras sean analizadas en forma oportuna. 

I. Introducción

A. Propósito

Este manual incluye recomendaciones para realizar la vigilancia de TB en vida silvestre en 

áreas donde se ha detectado TB bovina en ganado lechero y de carne, o en rebaños de cérvidos 

cautivos. El objetivo principal de las estrategias de vigilancia descritas, es determinar si la TB 

bovina está presente en la vida silvestre o en localidades alrededor de las áreas infectadas. 
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Detección de TB

Después de la detección de TB bovina en el ganado doméstico, por lo general resulta 

importante determinar si la vida silvestre que se desplaza libremente también está infectada. Si 

se detecta TB bovina en la vida silvestre, se llevará a cabo una evaluación de riesgo al ganado 

doméstico relacionado con los hallazgos de TB bovina en vida silvestre. Dependiendo de los 

resultados de la evaluación, un plan de manejo de TB podrá ser desarrollado mediante 

esfuerzos conjuntos entre el organismo estatal de vida silvestre, WS, y VS. Estos planes de 

manejo de la TB deberán incluir disposiciones para investigar en mayor medida la presencia de 

TB bovina, minimizar su expansión geográfica, incrementar la vigilancia, y eventualmente 

evitar que la enfermedad en vida silvestre se desplace libremente al ganado doméstico y vice 

versa. 

Contenido del Manual

Este documento incluye los siguientes lineamientos para obtener y enviar muestras de vida 

silvestre: 

• Suministros de muestreo

• Protocolos para obtener muestras

• Especies para muestreo

• Tamaños de muestras

• Equipo de Seguridad y Protección Personal (EPP)

• Protocolos para el envío de muestras

• Manejo de datos

Las preguntas relacionadas con este manual pueden dirigirse a los contactos apropiados 

enlistados en el Apéndice A. 

B. TB Bovina

La TB bovina es una enfermedad bacterial crónica (principalmente del ganado) originada por 

el microorganismo Mycobacterium bovis. La enfermedad puede afectar a otras especies, 

incluyendo a los humanos y a la vida silvestre. La TB bovina es frecuentemente transmitida a 

los humanos mediante la inhalación de bacterias contenidas en aerosoles provenientes de las 

vías respiratorias, ingestión de leche no pasteurizada, y la inoculación por medio de 

instrumentos contaminados (como cuchillos). La enfermedad puede diseminarse del ganado a 

la vida silvestre o de la vida silvestre al ganado por vía fecal-oral, la ingestión de comida 

contaminada, o a través de las vías respiratorias. El Programa de Erradicación de TB Bovina de 

APHIS ha reducido la TB en el ganado de EU; sin embargo, el contagio entre la vida silvestre 

puede mantener al microorganismo en el ambiente y funcionar como una fuente de reinfección 

para el ganado. 
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II. Estrategias de Vigilancia y Recolección de Muestras

A. Estrategias para la Identificación de Animales para Muestreo

Especies Objetivo

Los primeros casos documentados de TB bovina en la vida silvestre en Norteamérica fueron 

identificados en dos venados cola blanca en 1933, un venado cola blanca en 1937, y un venado 

cola blanca en 1961. Todos esos casos se presentaron en la misma área en Nueva York.

Subsecuentemente se encontró en venados cola blanca en el norte de Michigan en 1975. Un 

segundo caso de la misma área de Michigan en 1994 llamó la atención a la posibilidad de que 

la vida silvestre fuera un huésped reservorio para el M. bovis. Desde 1995, M bovis, ha sido 

detectada en varias especies de vida silvestre en Norteamérica. Estas especies incluyen: 

• Venado cola blanca (Odocoileus virginianus) • Ciervo (Cervus canadensis)

• Ciervo mula (Odocoileus hemionus) • Bisonte (Bison bison)

• Mapaches (Procyon lotor) • Alce (Alces alces)

• Coyotes (Canis latrans) • Zarigüeya (Didelphis virginiana)

• Gato silvestre (Felis silvestris catus) • Zorro gris (Urocyon cinereoargenteus)

• Osos negros (Ursus americanus) • Jabalí (Sus scrofa)

• Lobos grises (Canis Iupus) • Zorro rojo (Vulpus vulpus)

• Lince (Lynx rufus)

Las especies enlistadas anteriormente deben tomarse en cuenta para su incorporación a un plan 

de vigilancia, si se localizan en el área donde se encuentran animales infectados con TB. 

Debido a que cualquier mamífero puede contagiarse con TB bovina, se debe tener presente el 

muestreo de otras especies. Se sabe que algunas especies infectadas con el M. bovis son una 

fuente de reintroducción, mientras otras especies no han sido identificadas como un riesgo, 

para la vida silvestre o para el ganado doméstico. 

Con un mayor conocimiento de la participación de la vida silvestre en la ecología de la TB 

bovina, existe también la necesidad de entender mejor la relación entre la vida silvestre, el 

ganado doméstico, y los brotes de TB bovina. Nuevos casos detectados de TB bovina en 

rebaños domésticos dan origen a preguntas relacionadas con el estatus de infección de la vida 

silvestre en áreas con presencia de rebaños infectados y el potencial para la transmisión de TB 

bovina a partir de vida silvestre infectada a otros animales en el área. 

Vida Silvestre Residente 

La vida silvestre residente tiene pequeños rangos de residencia y pasa la mayor parte de su 

tiempo en las proximidades de las localidades afectadas. 
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Después de capturar y muestrear animales de vida silvestre residente en las localidades 

afectadas con TB en Michigan, se encontraron mamíferos peridomésticos residentes infectados 

con TB bovina (p. ej. mapaches y zarigüeyas) en aproximadamente dos terceras partes de las 

granjas analizadas. Estos esfuerzos de captura con duración de varios años en las localidades 

afectadas, indican que es mucho más probable que los casos detectados de TB bovina en 

mamíferos peridomésticos ocurran durante el primer año de captura después de que se detecta 

TB en un rebaño doméstico. La investigación actual no indica que los animales peridomésticos 

representen un riesgo de transmisión de la enfermedad al ganado doméstico. Sin embargo, se 

sugiere que estos animales sean retirados como parte del esfuerzo de limpieza y desinfección 

para reducir el potencial de reinfección. 

Se recomienda que los mamíferos residentes (p.ej., mapaches y zarigüeyas) sean capturados y 

retirados tan pronto como sea posible después de que una localidad sea identificada como 

infectada. Los esfuerzos de remoción deben continuar hasta que no existan especies objetivo 

retenidas por 5 noches consecutivas. Adicionalmente, los esfuerzos de remoción deben llevarse

a cabo a intervalos de 6 meses aproximadamente cuando las condiciones de captura sean 

óptimas (p.ej., primavera y otoño). El trampeo debe llevarse a cabo por un mínimo de 1 año 

después de que el último animal con TB positivo sea retirado. La extracción de animales 

peridomésticos no sirve únicamente para limpiar y desinfectar las localidades, sino que pueden 

ofrecer la oportunidad de aprender más acerca del papel potencial que estos animales tienen en 

la epidemiología de la TB bovina. Las pruebas realizadas a estos animales son altamente 

recomendables. 

Vida Silvestre Transitoria

La vida silvestre transitoria son animales que generalmente presentan rangos de residencia 

mayores que el tamaño de las granjas o ranchos en el área y, por consiguiente, pasan solamente 

una porción de su tiempo en las localidades infectadas (p.ej., venados, coyotes y jabalíes). 

Estos animales pueden tener un contacto menos directo con los rebaños domésticos, pero 

debido a su mayor desplazamiento, pueden tener un mayor potencial para esparcir la TB 

bovina a través de contacto indirecto (p. ej., contaminación de alimentos) o pueden actuar 

como centinelas para la enfermedad. 

Coyotes

Investigaciones publicadas recientemente indican que los coyotes son buenos centinelas para la 

TB bovina. Las infecciones han sido principalmente detectadas en los nódulos linfáticos 

mesentéricos de coyotes, los cuales indican que la micobacteria fue ingerida. Se recomienda 

que el muestreo de coyotes comience en menos de un rango de residencia del perímetro de las 

localidades infectadas para distinguir entre los coyotes que ingirieron ganado infectado de las 

localidades vecinas. Si se desconocen los rangos de residencia de los coyotes locales, la 

vigilancia debe llevarse a cabo más allá de un radio interior de 10 millas (es decir, sin muestreo 
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dentro de las 10 millas de las localidades afectadas). Puede requerirse una re-evaluación del 

área de estudio si se identifican rebaños de ganado lechero, de carne o cérvidos. 

El objetivo de las muestras de coyotes es ayudar a delimitar la extensión de la TB bovina en el 

entorno, y no determinar si la vida silvestre o el ganado son la causa de infección o para 

estimar la prevalencia de la enfermedad en las especies objetivo. 

Este tipo de muestreo es metafóricamente similar a la forma de una dona, en donde el centro de 

la dona representa las localidades infectadas, y la dona o el área alrededor, representa a las 

localidades que están un rango de residencia (o 10 millas). El muestreo de coyotes comienza 

alrededor del perímetro de la dona. 

Los coyotes son animales territoriales y se trasladarán a nuevos territorios cuando otros coyotes 

sean desplazados. Por lo tanto, las muestras deben obtenerse dentro de 6 meses para asegurarse 

de que la información reunida sea de coyotes en el área alrededor en vez de que sea de coyotes 

de territorios adyacentes. De ser posible, las muestras deben recolectarse de 10 coyotes (de al 

menos 1 año de edad) más allá del perímetro de la granja infectada dentro de los 6 meses de 

identificación de las localidades infectadas. 

Jabalíes

La TB bovina no ha sido detectada en la población de jabalíes en el territorio continental de los 

Estados Unidos, y la epidemiología de la TB bovina en países donde M. bovis ha sido 

identificada no es comprendida completamente. Los jabalíes son considerados huéspedes 

incidentales en algunas áreas y como reservorios en otras áreas con altas densidades. Para 

mitigar la amenaza potencial de TB bovina relacionada con el jabalí, se recomienda que se 

10 millas 

o 1 rango de 

residencia

Granja 

Infectada 

de TB 

Muestreo de coyotes 

alrededor del perímetro 

No muestreo de coyotes 

en las localidades 

infectadas o dentro de 1 

rango de residencia 

dentro de las localidades
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realicen esfuerzos para extraer todos los jabalíes dentro de 10 millas a la redonda de la granja 

infectada o a una distancia determinada por los expertos en vida silvestre local. 

Cérvidos

Los estudios telemétricos realizados en Michigan indican que un pequeño subconjunto de 

venados cola blanca comprenden la mayoría de las visitas a granjas. Adicionalmente, los 

venados que visitan una granja son más propensos a visitar múltiples granjas. Se sabe que los 

cérvidos pueden infectarse y transmitir TB bovina por vía respiratoria u oral y se consideran 

como reservorios en algunas áreas. Por consiguiente, muestras de cérvidos son de alta 

prioridad. 

Pasos de Muestreo

Los siguientes pasos (sin un orden en particular) se recomiendan dentro del área de vigilancia 

designada: 

1. Retirar y muestrear al venado y al jabalí dentro de 10 millas de las localidades 

infectadas dentro de un radio de muestreo determinado por biólogos de vida silvestre 

local. Los tamaños de la muestra deseada y los periodos de tiempo para la recolección 

habrán sido determinados durante el desarrollo de un plan de muestreo. Normalmente, 

los tamaños de las muestras objetivo se alcanzarán dentro de 3 años. 

2. La obtención de muestras obtenidas por cazadores de cérvidos y jabalíes, dentro de la 

temporada de caza ayudará a alcanzar el número objetivo de muestras. 

3. Trampear y muestrear especies objetivo además de los cérvidos y jabalíes dentro de un 

radio de 1 a 2 millas de las localidades infectadas. 

4. Trampear y muestrear a los coyotes que se encuentren más allá de 1 rango de residencia 

o 10 millas de las localidades infectadas. 

5. Trampear, retirar y recolectar muestras de pequeños mamíferos conocidos como 

huéspedes incidentales de TB que están presentes en las localidades. La lista de 

especies en la sección II (A) puede ser utilizada como referencia para identificar las 

especies de interés. Consultar con los organismos encargados de la vida silvestre local 

antes de retirar a cualquier animal para garantizar el cumplimiento de las regulaciones 

estatales y federales. Se debe comenzar el muestreo tan pronto como sea posible 

después de la detección y continuar la captura hasta 1 año después de que la última vida 

silvestre TB positivo sea retirado. 

Tamaños de las Muestras

Vida Silvestre Residente

Podría no ser necesario establecer un tamaño de la muestra objetivo para animales 

peridomésticos porque se recomienda que sean retenidos en las localidades infectadas por al 

menos 1 año después que el último animal infectado sea retirado. Además, cada temporada de 

captura probablemente resultará en la extracción de toda la vida silvestre residente dado que la 

captura continuará hasta que no haya especies capturadas por lo menos 5 noches consecutivas.
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Vida Silvestre Transitoria

El número objetivo de muestras de animales transitorios (p.ej., venados) podrá ser recolectado 

utilizando una combinación de esfuerzos de vigilancia realizados por cazadores y por medio de 

agencias que se encuentran en o cerca de las localidades indexadas. Para la vigilancia por 

medio de agencias, las muestras de tejido son recolectadas por biólogos o veterinarios 

capacitados dentro del área de vigilancia designada (alrededor de las localidades afectadas) 

poco después de la muerte del animal. A estas muestras se les da mayor puntaje (es decir, se 

requieren recolectar menos muestras) que las muestras obtenidas de observaciones obtenidas 

por cazadores en donde el cadáver completo podría no estar disponible para el muestreo. 

Calculador del Tamaño de la Muestra 

Un calculador del tamaño de la muestra ha sido creado con base en la epidemiología de TB 

bovina en el venado cola blanca en Michigan. Este calculador proporciona un método para 

determinar el número de muestras requeridas para detectar la presencia de TB bovina en 

poblaciones de venado alrededor de granjas infectadas. También se pueden utilizar otros 

métodos o modelos para facilitar la determinación del tamaño de las muestras. El calculador 

asigna un puntaje específico a las muestras en base a la edad, género, y método de recolección 

e incluye una probabilidad de detección. Por ejemplo, a las muestras de venados machos 

mayores a 2 años de edad se les asigna mayor puntaje que a las muestras de venados menores a 

2 años de edad. Asimismo, los nódulos linfáticos enviados de todo el cadáver (necropsia 

completa) de animales específicamente seleccionados, reciben mayor puntaje que las muestras 

recolectadas por cazadores (donde únicamente la cabeza y los nódulos linfáticos asociados se 

encuentran disponibles para su evaluación). Sin importar la fuente, todas las muestras son 

contadas e incluidas en los cálculos. La probabilidad de detección es definida como la 

sensibilidad de todo el proceso, desde la recolección de las muestras hasta el análisis de las 

mismas. 

El número muestras designadas a realizar puede alcanzarse por un periodo de múltiples años, 

determinado durante el desarrollo de la estrategia de vigilancia de vida silvestre. No es 

necesario recolectar todas las muestras en 1 año. Sin embargo, el número de muestras 

designadas debe recolectarse en el menor tiempo posible para garantizar la detección oportuna 

de la enfermedad. (El calculador de la muestra está disponible al contactar a cualquiera de las 

cinco personas enlistadas en el Apéndice A). 

Nota: Se deberá tener precaución al aplicar este calculador de muestra a los ciervos y otra 

vida silvestre transitoria porque el mismo patrón de peso específico por edad y género puede 

no ser aplicable. Se debe consultar a los biólogos de la vida silvestre local para ver las 

densidades de población y para obtener asistencia al determinar un tamaño de muestra 

adecuado para ciervos. 
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Selección de Áreas Geográficas para Muestreo

Se debe capturar la vida silvestre residente en el área de vigilancia designada definida como 

localidades infectadas. Dado que los rangos de residencia para los cérvidos y otros animales 

transitorios varían dependiendo de la región del país y hábitat, la fórmula que se presenta a 

continuación puede ser utilizada para ayudar a determinar el área geográfica adecuada para 

llevar a cabo la vigilancia. Esta fórmula debe servir como un punto de inicio y no deberá ser 

utilizado como el único medio para determinar el área adecuada para tomar el muestreo. Se 

deben considerar las especies específicas que estén siendo captadas (p.ej., ciervo vs. venado) y 

la ecología particular de la población que se utiliza para muestreo. Adicionalmente, los asuntos 

relacionados con animales migratorios, no migratorios o una población con una combinación 

entre animales migratorios y no migratorios, también deben tomarse en cuenta, así como el 

género y los grupos de edad. 

Por ejemplo, si se encuentra TB bovina en un área donde los venados tengan un rango de 

residencia de 5 millas cuadradas, entonces 2 * √ (5/π) = 2.5, lo que significa que la vigilancia 

sería llevada a cabo dentro de un radio de 2.5 millas alrededor de las localidades infectadas o 

dentro de rangos de dos residencias de las localidades infectadas. Esta fórmula convierte los 

rangos de residencia y millas cuadradas en áreas circulares equivalentes. El diámetro del rango 

circular de residencia se convierte entonces en el radio de la zona de vigilancia. Es importante 

recordar que diferentes especies tienen diferentes tamaños de rangos de residencia y la misma 

especie puede tener diferentes tamaños de rangos de residencia en diferentes partes del país. 

B. Suministros

Suministros de Muestreo

Los Laboratorios Nacionales de Servicios Veterinarios (NVSL por sus siglas en inglés), 

proporcionarán los materiales para el muestreo a solicitud (ver Apéndice A para la información 

de contacto). Los materiales requeridos para tomar las muestras de un animal incluyen: 

• Dos frascos (90 mL) de formalina neutral amortiguada al 10 por ciento por cada animal

• Hasta tres Whirl-Paks® (u otras bolsas estériles) por animal para almacenar tejidos 

frescos

• Dos frascos de 4 onzas de solución de borato de sodio saturada por animal (opcional 

para la recolección de cérvidos y jabalíes)

• Seis códigos de barras por animal: dos para los frascos de formalina amortiguada 

(cabeza, pecho, abdomen), dos para los Whirl-Paks® o frascos de borato de sodio, uno 

para la hoja de datos, y uno para el frasco de suero (si aplica)

• Etiqueta de envío para FedEx o UPS

Fórmula para seleccionar el área geográfica de vigilancia

Radio de vigilancia=2 * √(A/π) donde A es el rango de residencia de la especie en millas cuadradas
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Herramientas de Necropsia 

Los materiales sugeridos para necropsia incluyen: 

• Cuchillo filoso (los cuchillos de caza y los cuchillos de rastro para deshuesar funcionan 

bien)

• Tijeras 

• Pinzas de diente de ratón

• Tabla de cortar

• Equipo de Protección Personal (ver EPP en la sección que se presenta a continuación) 

• Sierra para metales o sierra para huesos

• Tijeras pequeñas y grandes (tijeras de poda o cortadores de costillas en trinquete para 

caja torácica/esternón)

• Cincel y mazo

• Bisturí y navajas de afeitar (se recomiendan ampliamente los escalpelos desechables)

• Separadores de mandíbulas para cérvidos y jabalíes viejos

Suministros para la Recolección de Sangre

Los suministros para la recolección de sangre son únicamente utilizados para el muestreo de 

animales con lesiones visibles o granulomas. 

Los materiales incluyen: 

• Agujas de 1 a 1.5 pulgadas (o agujas Vacutainer® y sujetadores)

• Agujas de 3 a 4 pulgadas (para sangre intracardiaca de cérvidos y jabalíes)

• Jeringas de 10 mL

• Tubos Vacutainer®

• Crioviales ® de 4 ml

Otros Suministros

Otros suministros sugeridos incluyen: 

• Unidad del Sistema de Posicionamiento Global (GPS) (configurada a WGS84 y grados 

decimales)

• Desinfectante

• Cepillo para restregar

• Tina de hule grande (para desinfectar botas y herramientas de necropsia) 

• Hojas de datos

• Bolsas de plástico (grandes para el desechos de cadáveres y pequeñas para la 

recolección de muestras)

• Sharpie® o marcador indeleble (para etiquetado)

• Pluma (para llenar las hojas de datos)

• Hojas de plástico, virutas de madera, arena para mascotas, u otros absorbentes (para 

pisos en área de trabajo)

• Contenedor de objetos cortopunzantes 

• Bolsa de residuos de riesgo biológico
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• Cámara digital

• Regla (para medir lesiones y/o tejido)

C. Lineamientos del Equipo de Seguridad y Protección Personal 

Recomendaciones para Biólogos y Veterinarios a Cargo de la Vida Silvestre 

La TB bovina es una zoonosis y presenta un riesgo para la salud y seguridad humana. Debido a 

este riesgo, todos los cadáveres deben ser manejados con precaución y deben ser considerados 

como potencialmente infecciosos. Se deben tomar y practicar las precauciones necesarias para 

la seguridad personal. 

No coma, beba o fume durante la disección de un cadáver o mientras se recolectan las 

muestras. Establezca una zona de trabajo limpia y una zona de trabajo contaminada (línea 

limpia/sucia) con un área para desinfectar los suministros, equipo y personal entre las dos 

áreas. Coloque las hojas de datos, el GPS, cámaras, y otros equipos no desechables en bolsas 

de plástico o contenedores que puedan ser desinfectados o desechados. 

Todo el personal que lleve a cabo las necropsias o que maneje animales que pudieran estar 

infectados con TB bovina, también deberán contar con una prueba de TB antes de cualquier 

potencial exposición, esta prueba deberá realizarse en forma anual en lo sucesivo (o según 

recomendación de un profesional del área de la salud). 

Equipo de Seguridad y Protección Personal (EPP)

Al utilizar equipo de protección personal se disminuye el riesgo de infección humana, al 

minimizará el contacto con agentes infecciosos de los fluidos corporales y aerosoles. Todas las 

herramientas e instrumentos de necropsia deben ser desinfectados antes y entre necropsias, y 

después del muestreo para prevenir la contaminación cruzada y la infección. 

Se recomienda el siguiente EPP durante la recolección de muestras de vida silvestre: 

• Guantes desechables de gruesos (hule o nitrilo)

• Guante de asbesto resistente a cortes en la mano no dominante

• lentes de protección, gafas de seguridad, o protección facial

• Delantal desechable o un delantal que pueda ser desinfectado

• Protectores para el antebrazo

• Overoles de tela o Tyvek®

• Botas de hule

• Red para el cabello o gorro que pueda ser desinfectado

• Respirador (máscara N95 como mínimo)

Trabaje a contraviento de los cadáveres al desempeñar las necropsias al aire libre. Siempre 

lávese las manos y la piel expuesta con jabón y agua tibia o con un limpiador a base de alcohol 

después de recolectar las muestras.
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Manejo de Substancias Dañinas

El borato de sodio y la formalina amortiguada al 10 por ciento son substancias peligrosas que 

pueden ser inhaladas o absorbidas a través de la piel. Maneje todas las substancias dañinas 

cuidadosamente al tomar las muestras y al enviarlas (ver Apéndices B y C). 

Los desinfectantes también son potencialmente peligrosos y deben ser manejados con cuidado. 

Las Hojas de Datos de Seguridad del Material para cada químico deben ser revisadas antes de 

utilizarse para asegurar que los recolectores estén al tanto de los peligros asociados con el 

manejo de desinfectantes y químicos y tomen las precauciones adecuadas. 

Desecho de Cadáveres y Desinfectantes

El cadáver y todos los tejidos del cadáver deben desecharse de acuerdo con las regulaciones 

estatales y locales para el desecho de cadáveres de animales. Dependiendo del estado o del 

área, los métodos pueden incluir el entierro, incineración, composta, o la colocación en doble 

bolsas y su transporte a un vertedero. Todo el papel o materiales plásticos contaminados deben 

ser considerados como desechos peligrosos y deben ser completamente desinfectados, 

incinerados o colocados en doble bolsa y desechados en un vertedero (en caso que esté 

permitido). 

Toda la sangre y los tejidos deben ser retirados de los instrumentos y herramientas de necropsia 

con jabón y agua, enjuagados, y subsecuentemente desinfectados con un desinfectante 

aprobado para TB bovina entre las necropsias. Si las necropsias se realizan en un ambiente de 

laboratorio, un contenedor de 70 por ciento de etanol o alcohol reactivo con arena en el fondo 

puede ser utilizado para descontaminar los instrumentos entre animales. El líquido en exceso 

debe ser flameado utilizando un mechero Bunsen o una antorcha de propano. Si los 

desinfectantes no son enjuagados completamente (flameados) de los instrumentos, se puede 

originar resultados falsos negativo. Contrariamente, si no se desinfectan los instrumentos, entre 

animales, pueden dar resultados falsos positivos. 

También se deben cambiar los guantes entre animales. Las botas, delantales y ropa 

contaminada durante la necropsia deben ser limpiados y completamente desinfectados al 

Formalina Amortiguada Borato de Sodio
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terminar la recolección de muestras. Las superficies externas de los contenedores con muestras 

deben ser desinfectadas. 

Los productos enlistados en la tabla siguiente son desinfectantes vigentes, amigables con el 

ambiente para su uso en la TB bovina. Se pueden encontrar desinfectantes adicionales para TB 

aprobados en la Lista B de los Programas Pesticidas de la Oficina de la Agencia 

Estadounidense de Protección Ambiental (EPA, siglas en inglés): “Productos Registrados para 

Tuberculosis efectivos contra el Mycobacterium tuberculosis” de la EPA.

Desinfectante

Tiempo para 

desinfectar

efectivamente

Amigable con el ambiente Fabricante

Oxivir®Tb 5 minutos Los ingredientes activos se 

degradan con agua y oxígeno

Johnson

Diversey

Opti-Cide 3® 3 minutos No contiene fenoles peligrosos, 

cloro, tintes o perfumes 

artificiales

MicroScientific 

Industries

Blanqueador Clorox® 

(Mezcla de 1 parte de 

blanqueador con 9 partes 

de agua)

5 minutos El producto no contiene cloro 

libre y se degrada con agua 

salada después de su uso; no 

contiene dioxinas ni contamina 

el agua subterránea

Compañía 

Clorox®

Desecho de Guantes y Desechos Relacionados con las Muestras 

Rocíe o empape el desecho con desinfectante y colóquelo en una bolsa. Rocíe o empape la 

bolsa con desinfectante, coloque la bolsa dentro de otra bolsa, y deséchela en el vertedero (si 

está permitido). 

D. Recolección de Especímenes

Recomendaciones Generales

A pesar de los restrictivos protocolos de descontaminación utilizados en el laboratorio, los 

especímenes de tejidos aún pueden quedar cubiertos por hongos y bacterias en el ambiente, y 

por consiguiente impiden la capacidad de recuperar cualquier micobacteria viable presente en 

los tejidos. Para minimizar el crecimiento excesivo, es importante recolectar las muestras de 

tejidos tan pronto como sea posible después de muerto el animal. Recolectar los tejidos de 

animales dentro de las dos horas siguientes cuando sea posible. Si el animal ha estado muerto 

por más de 24 horas, contacte al laboratorio antes de enviar las muestras para histopatología. 

Al llevar a cabo la necropsia, recolecte los tejidos utilizando técnicas asépticas desde la cabeza, 

cavidad torácica, y cavidad abdominal (en ese orden) para minimizar la contaminación 

cruzada. 
16

Los procedimientos de necropsia específicos por especie son proporcionados en los siguientes 

apéndices: 

• Apéndice D para mapaches

• Apéndice E para venados u otros cérvidos

• Apéndice F para coyotes

• Apéndice G para zarigüeyas

• Apéndice H para jabalís

Recolección y Almacenamiento de Muestras

Recolecte los tejidos de los animales dentro de 2 horas cuando sea posible y envíelos al NVSL 

dentro de las primeras 72 horas. Si se retrasa el envío de las muestras al NVSL se pueden 

obtener resultados falsos negativos. Una exposición prolongada al borato de sodio puede hacer 

que la recuperación de M. bovis sea imposible. Una exposición prolongada a formalina 

amortiguada al 10% podría desnaturalizar las proteínas y hacer que las muestras se vuelvan 

inadecuadas para su análisis. 

Las muestras enviadas para histopatología deben colocarse en formalina amortiguada al 10%. 

Las muestras enviadas para cultivo deben ser recolectadas en Whirl-Paks® y mantenidas en 

frío hasta su envío, o en borato de sodio a temperatura ambiente. Los tejidos de la cabeza y el 

pecho pueden combinarse en el mismo Whirl-Paks® o en un frasco. Sin embargo, los nódulos 

linfáticos o los tejidos de la región abdominal deben colocarse en contenedores separados para 

evitar la contaminación. Las muestras frescas, bien preservadas incrementan la probabilidad de 

cultivos y de la detección de M. bovis. 

Muestras para Recolectar

Se deben recolectar nódulos linfáticos submandibulares, retrofaríngeos, traqueobronquiales, 

mediastínicos, y mesentéricos de cada animal, así como una sección de amígdalas, pulmones, y 

cualquier tejido con lesiones macroscópicas. Se deben examinar cuidadosamente los pulmones 

y palpar para detectar anomalías. Se deben recolectar los nódulos linfáticos parótidos de los 

cérvidos y jabalíes. La recolección de nódulos linfáticos mesentéricos de los no cérvidos es 

especialmente importante porque las lesiones generalmente se encuentran en estos nodos. La 

sangre debe también ser recolectada de animales que exhiben lesiones macroscópicas que 

sugieren la infección de TB bovina. 

Cuándo Utilizar Formalina, Bolsas Whirl-Paks® y/o el Borato de Sodio

Las muestras enviadas para cultivo deben colocarse en Whirl-Paks®. Las muestras enviadas 

para histopatología deben colocarse en frascos de formalina amortiguada al 10%. Los nódulos 

linfáticos y tejidos recolectados de cérvidos y jabalís pueden ser colocados en frascos con 

borato de sodio para el cultivo, en caso que así lo prefiere el recolector de muestras. Una 

ventaja del borato de sodio es que el tejido puede ser preservado sin refrigeración y reduce el 

riesgo de contaminación de tejidos por otras bacterias. Sin embargo, si la muestra no llega al 

laboratorio para el de cultivo dentro de 72 horas, el borato de sodio puede penetrar la muestra 

del tejido y matar a cualquier micobacteria que pueda estar presente, por lo tanto se incrementa 

el riesgo de un resultado de cultivo como falso negativo. Los tejidos de especies diferentes a 

cérvidos o al jabalí son demasiado pequeños (menos de 1 pulgada en diámetro) para colocarse 
17

en el borato de sodio debido a que el borato penetrará el tejido demasiado rápido y matará a 

cualquier micobacteria presente. 

Utilice una proporción de 10:1 de formalina con respecto al tejido cuando se envíen muestras 

para histopatología. Los tejidos colocados en formalina deberán ser aproximadamente de 3/8

pulgadas o menos (p.ej., el ancho de un lápiz). Para tejidos más grandes, corte secciones de 1⁄4 

de pulgada para colocarlas en la formalina. Utilice partes iguales de tejido y borato de sodio 

(de ser adecuado) al enviar muestras para cultivo micobacteriológico. Los tejidos enviados en 

Whirl-Paks® deben ser refrigerados o colocados en una hielera con hielo hasta que sean 

enviados al laboratorio. Si los tejidos frescos para cultivo deben ser retenidos por más de 72 

horas antes de su envío, congele a -20°C y envíe los tejidos congelados con paquetes de hielo. 

Prueba Especie Recolección de Tejidos

Histopatología Todas Formalina

Cultivo Todas Whirl-Paks®

Cultivo (opcional) Cérvidos y Jabalíes Borato de sodio

Nódulos Linfáticos en Cabeza y Tejidos

Los nódulos linfáticos retrofaríngeos, submandibulares y parótidos, así como las tonsilas son 

los órganos blanco utilizados para el muestreo. Sin embargo, las parótidas son difíciles de 

localizar en pequeños mamíferos; por lo tanto, no es necesario enviarlas de animales no 

cérvidos (que no sean jabalíes). Los nódulos linfáticos en la cabeza y en la región del cuello 

son pares. Enviar los nódulos linfáticos parótidos, submandibulares, y retrofaríngeos de cada 

animal cuando sea posible. Para los animales no cérvidos, recolecte uno de cada nódulo 

linfático para cultivo y el otro para histopatología. Para cérvidos y jabalíes, los nódulos 

linfáticos deben estar seccionados antes de colocar las muestras en formalina. Coloque una 

sección de 3/8 pulgadas (ancho de un lápiz) de cada nódulo linfático en formalina para 

mantener el resto de cada cultivo para su envío. Si no se pueden recuperar ambos nódulos 

linfáticos de cada animal, envíe uno para el análisis de histopatología. Cuando sea posible, 

extraiga las tonsilas para enviarlas a análisis (una por cultivo, y una para histopatología).

Nódulos Linfáticos Torácicos y Tejidos

Todos los tejidos y nódulos del pecho deben ser examinados completamente para detectar 

evidencia de infección por TB (es decir, lesiones). Los nódulos linfáticos de la cavidad del 

pecho incluyen el nódulo linfático mediastínico (cadena de nódulos; normalmente encontrados 

entre la aorta y los pulmones, cerca del corazón) y los nódulos linfáticos traqueobronquiales 

(pareados y encontrados donde la tráquea se divide en los bronquios principales de cada lado). 

Debido al pequeño tamaño de estos nódulos linfáticos en especies diferentes a los cérvidos, se 

deben recolectar y enviar únicamente para cultivo. Se deben examinar cuidadosamente los 

pulmones y enviar una subsección de al menos dos lóbulos del pulmón. 

Nódulos Linfáticos de la Cavidad Abdominal

Los nódulos linfáticos mesentéricos son los únicos que se envían rutinariamente de la cavidad 

abdominal. Se localizan en el mesenterio asociado con el intestino, y generalmente es más 

notorio entre los pliegues del intestino delgado donde convergen los vasos sanguíneos. La 

colocación y tamaño de los nódulos linfáticos puede variar dependiendo de la especie. Se 
18

deben examinar cuidadosamente los nódulos linfáticos mesentéricos de los no cérvidos porque 

las lesiones en estos nodos linfáticos son más comunes en no cérvidos que en cérvidos. Para 

especies con nódulos linfáticos mesentéricos mayores a 3/8 pulgadas de grosor (ancho de un 

lápiz), coloque secciones de 3/8 pulgadas en formalina para histopatología y conserve el resto 

para cultivo. 

Recolección de Lesiones o de Tejido Anormal 

Todas las lesiones observadas deben enviarse en contenedores separados para el análisis del 

laboratorio. Cuando se encuentran múltiples lesiones en el mismo tejido, envíe una pequeña 

sección (del tamaño de una pelota de golf) para histopatología y cultivo, e incluya secciones de 

tejido normal adyacente. Si únicamente se encuentra una lesión, divida el tejido a la mitad a 

través del centro de la lesión y envíe la mitad a histopatología y la mitad a cultivo (incluir 

tejido adyacente normal). Si existen lesiones diferentes para dividir, envíe el tejido disponible 

para análisis de cultivo únicamente (ver Apéndice I). 

Al realizar el muestreo, examine cuidadosamente la cavidad torácica y los pulmones para 

detectar la presencia de lesiones y/o granulomas. Asegúrese de palpar e inspeccionar 

visualmente cada lóbulo pulmonar cuidadosamente (ver Apéndice 1). 

IMPORTANTE: Recolecte los tejidos con lesiones en un contenedor separado. No incluya 

lesiones en los mismos contenedores con nódulos linfáticos o tejidos regularmente 

recolectados, o en un contenedor con otras muestras de tejidos lesionados. Etiquete el 

contenedor (no la tapa) con la ubicación donde las lesiones fueron encontradas. Al enviar el 

tejido con las lesiones, asegúrese de documentar lo siguiente en la sección de comentarios de la 

hoja de datos: el origen del tejido afectado, número de lesiones, distribución y patrón, tamaño, 

forma, color, consistencia, y textura de la lesión. Adicionalmente, envíe una fotografía digital 

de todas las lesiones con un objeto adyacente que indique la escala de la lesión, de ser posible. 

Selección y Preservación de Tejidos

1. Siempre limpie y desinfecte los instrumentos entre necropsias de cada animal. Si 

existen bisturís desechables, deshágase de ellos después de la necropsia de cada animal. 

Enjuague los instrumentos completamente después de desinfectarlos para asegurarse de 

que las muestras no sean desinfectadas por error. Cambie de guantes entre necropsias 

de cada animal. 

2. Envíe los nódulos linfáticos en contenedores separados, en base a la zona del cuerpo de 

donde se hayan extraído (cabeza y pecho combinados, y abdomen en un contenedor 

separado). Utilice 2 frascos de formalina y 2 Whirl-Paks® (o 2 frascos de borato de 

sodio opcionales para cérvidos o para jabalí) para todas las demás especies, en caso de 

que no se observen lesiones macroscópicas. Nota: los tejidos con lesiones deben ser 

enviados en contenedores separados para cultivo y etiquetados con el tipo de tejido 

además del código de barras.

3. Etiquete los Whirl-Paks® con los últimos 4 dígitos del código de barras y “HC” (siglas 

en inglés que corresponden a cabeza y pecho), o “A” (siglas en inglés que corresponde 

o abdomen) (ver la figura siguiente). Después de que las muestras han sido 

recolectadas, coloque todos los Whirl-Paks® en una bolsa Ziploc® más grande con el 

código de barras fijado a la bolsa Ziploc®.
19

4. Asigne un código de barras único a cada animal. Aplique un código de barras con el 

mismo número a los frascos de formalina, la bolsa Ziploc® (con los Whirl-Paks® 

adentro), el frasco de suero, y la hoja de datos. Los tejidos de diferentes animales nunca 

deben combinarse en los mismos frascos o Whirl-Paks®. 

5. Para las muestras enviadas para histopatología divida los tejidos o los nódulos linfáticos 

en porciones de aproximadamente 3/8 de pulgada de grosor (el ancho de un lápiz). 

Coloque los nódulos linfáticos o los tejidos en el frasco de formalina. Si se observan 

lesiones, recolecte las secciones de las lesiones e incluya tejidos normales que estén 

alrededor de las lesiones. Los nódulos linfáticos enviados para histopatología deben 

cortarse a la mitad para asegurarse que se fijen a la formalina (a menos que sean del 

tamaño de un frijol o más pequeños). 

6. Para nódulos linfáticos pequeños, no los corte a la mitad cuando los envía para cultivo. 

Almacene los tejidos frescos en Whirl-Paks® y luego coloque las muestras en hielo. 

Para nódulos linfáticos más grandes (>3/8 de pulgada de grosor) córtelos en secciones 

de 3/8 de pulgada para fijarlos en formalina y envíe el resto para cultivo. Para la 

recolección de muestras de cérvidos utilizando borato de sodio, corte un cubo de 1 

pulgada de tejido (aproximadamente del tamaño de una pelota de golf) y coloque el 

nódulo linfático o tejido en el frasco de borato de sodio. Los tejidos de menos de 1 

pulgada de grosor no deben colocarse en borato de sodio. 

7. Si el volumen de la muestra es insuficiente para enviar para histopatología y cultivo, se 

recomienda que la muestra sea enviada para cultivo si hay lesiones macroscópicas 

presentes; sí no hay lesiones macroscópicas presentes las muestras deben ser enviadas 

para histopatología. 

8. Después de la recolección de las muestras, desinfecte el exterior de cada Whirl-Pak® o 

contenedor con un desinfectante aprobado para TB. Sea precavido para asegurar que 

ningún desinfectante ingrese al Whirl-Pak® o al contenedor. Recuerde mantener la 

superficie húmeda con la solución de desinfectante durante el tiempo de contacto 

requerido (ver la tabla de la página 13 o consulte la etiqueta del producto). Enjuague 

con agua después de que se ha cumplido con el requerimiento del tiempo de contacto. 
20

9. Ajuste y cierre bien las tapas de los contenedores con las muestras y séllelas con 

Parafilm®. También se puede utilizar cinta para sellar cables eléctricos, en caso de que 

no haya Parafilm® disponible. Coloque un código de barras en el exterior del 

contenedor de las muestras. Los Whirl-Paks® para el cultivo y los frascos de formalina 

para histopatología recibirán el mismo número debido a que son del mismo animal. 

10. No congele las muestras que serán enviadas a histopatología. Los tejidos frescos para 

cultivo enviados en Whirl-Paks® deben mantenerse fríos en hielo o refrigerados hasta 

que se envíen al laboratorio. Si los tejidos frescos van a ser retenidos por más de 3 días 

antes de su envío, congele a -20°C y envíe los tejidos congelados en paquetes con hielo. 

Los tejidos fijados en formalina, así como los tejidos frescos almacenados en borato de 

sodio pueden mantenerse a temperatura ambiente hasta que sean enviados. 

11. Las muestras deben ser enviadas NVSL dentro de las 24 horas de su recolección 

cuando sea posible. Evite la entrega en fin de semana, y revise los días festivos, a 

menos que se haya realizado un arreglo previo con el personal del laboratorio (ver la 

sección de envíos a continuación para ver las instrucciones y la dirección). 

Especie Zona Muestras recolectadas Almacenamiento

Cérvidos y 

Jabalíes

Cabeza retrofaríngeo, submandibular, 

parótida, tonsilas Whirl-Paks® para cultivo 

(borato de sodio opcional) y 

formalina para histopatología

Pecho mediastínico, traqueo 

bronquial, pulmón

Abdomen mesentérico

Lesiones cualquier tejido con lesiones

No Cérvidos 

(Mapaches, 

Zarigüeyas y 

Coyotes)

Cabeza retrofaríngeo, submandibular, 

tonsilas

Whirl-Paks® para cultivo y 

formalina para histopatología Pecho mediastínico, traqueo 

bronquial, pulmón

Abdomen mesentérica

Lesiones cualquier tejido con lesiones

Recolección de Sangre

La sangre solo debe recolectarse de animales de vida silvestre con lesiones visibles o 

granulomas. Si se observan TB bovina o granulomas similares a TB o lesiones en cualquier 

parte del cadáver, utilice una jeringa para extraer tanta sangre como sea posible del corazón. 

1. Coloque la sangre extraída en un tubo de tapa roja o separador de sueros de 10 mL 

(recolecte al menos dos tubos de ser posible). 

2. La sangre debe dejarse reposar sin movimiento por aproximadamente 30 minutos a 

temperatura ambiente, para propiciar la formación de coágulos antes de la 

centrifugación. 

3. Centrifugar por 10 minutos a un mínimo de 1,800 revoluciones por minuto por 15 

minutos para separar el suero de las células sanguíneas. Posteriormente utilice una 

pipeta estéril desechable para transferir el suero al tubo Cryovial® de polipropileno (o 

vierta el suero hacia afuera en caso de utilizar un tubo separador se suero). Si no hay 
21

una centrifuga disponible, se puede obtener el suero dejando que el coágulo o las 

células sanguíneas se asienten, luego enfríelo en el refrigerador para contraer el 

coágulo, y finalmente transfiriendo a un tubo Cryovial® de polipropileno. 

4. Envíe al menos 1 mL de suero al banco de suero de TB. Transfiera el suero a un solo 

frasco Cryovial® de polipropileno y refrigere o transfiera 0.5 mL del suero en un tubo 

Cryovial® de 1.2 mL y congele a -20 °C. 

5. Etiquete el tubo de suero con el número del código de barras utilizando un Sharpie® o 

marcador permanente. 

6. El suero refrigerado debe enviarse al NVSL con paquetes de hielo dentro de las dos 

semanas de su recolección. 

7. El suero congelado puede ser enviado al NVSL una vez al mes en hielo seco para 

garantizar que las muestras se mantengan congeladas durante el envío. No congele las 

muestras de suero que contengan más de 0.5 mL de suero. Esto reducirá el número de 

ciclos de congelación y descongelación durante el procesamiento en el NVSL para 

garantizar que la calidad de la muestra se mantenga.

Envíe todo el suero a:

National Veterinary Services Laboratories

Attention: Jeff Nelson, TB Serum Bank

1920 Dayton Avenue

Ames, Iowa 50010

Las preguntas relacionadas con la recolección de suero o los procedimientos de su manejo 

deberán dirigirse a Jeff Nelson por correo electrónico a Jeffrey.T.Nelson@aphis.usda.gov o por 

teléfono al (515) 337-7966.

Adecuado Etiquetado de las Muestras

Todas las muestras recolectadas del mismo animal deben etiquetarse con el mismo y único 

código de barra, incluyendo muestras de suero. Esta etiqueta debe colocarse en el contenedor 

(no en la tapa). Si se envían tejidos frescos en Whirl-Paks®, al menos los últimos cuatro 

dígitos del número del código de barras deberá ser escrito con un Sharpie® o marcador 

permanente. Todos los Whirl-Paks® individuales deben almacenarse en una bolsa Ziploc® 

más grande identificada con el mismo código de barras. Coloque las muestras almacenadas en 

Whirl-Paks® en una hielera y/o en paquetes de hielo, o refrigérelas inmediatamente. 

Envío de Muestras al NVSL

Envíe todos los tejidos frescos fijados en formalina (o borato de sodio) para cada animal en un 

solo contenedor de envío. El NVSL asignará un número de acceso a cada envío y mantendrá 

las muestras juntas para garantizar que los resultados sean reportados bajo el mismo número de 

acceso. 

1. Selle una copia de la Hoja de Datos de Vigilancia de Tuberculosis Bovina en Vida 

Silvestre (ver Apéndice J) y una copia de la forma VS 10-4 (ver Apéndice K) en una 

bolsa de plástico y colóquelas entre la caja de la hielera (StyrofoamTM) y la caja de 

cartón. No coloque las hojas de datos dentro de la hielera (StyrofoamTM). 

2. Selle la caja con cinta de empacado. 
22

3. Las muestras deben enviarse los días lunes, martes, miércoles o jueves de cada semana 

para asegurar su llegada al laboratorio en un día entre semana. 

4. Contacte el laboratorio antes del envío y proporcione el número de muestras enviadas 

para histopatología y cultivo, así como el número de guía de FedEx o UPS (consultar el 

Apéndice A para ver la información específica de contacto del laboratorio). 

5. Todas las muestras deberán ser enviadas con prioridad de FedEx o UPS de un día al 

otro utilizando la etiqueta pre-pagada de FedEx o UPS proporcionada por el NVSL a: 

U.S. Department of Agriculture

Animal and Plant Health Inspection Service

National Veterinary Services Laboratories

TB Wildlife Surveillance Samples

1920 Dayton Road

Ames, Iowa 50010

Comunicación Cuando Se Envían las Muestras al NVSL

Contacte al laboratorio antes del envío (ver Apéndice A). Notifique al Laboratorio de 

Micobacteriología al enviar las muestras para cultivo por teléfono al (515) 337-7388 o por 

correo electrónico a Suelee.Robbe-Austerman@aphis.usda.gov o a 

Doris.M.Bravo@aphis.usda.gov. Se puede contactar al personal del laboratorio de 

histopatología por teléfono al (515) 337-7521 o por correo electrónico a 

Bruce.V.Thomsen@aphis.usda.gov o a Mark.Hall@aphis.usda.gov. Para las muestras de suero, 

notifique a Jeff Nelson por teléfono al (515) 337-7966 o por correo electrónico a 

Jeffrey.T.Nelson@aphis.usda.gov. 

Reporte de los Resultados

Los resultados serán reportados directamente al emisor por correo electrónico. El emisor es 

responsable ya sea de enviar una hoja de datos actualizada al Programa Nacional de 

Enfermedades en Vida silvestre de los Servicios de Vida Silvestre (Wildlife Services’ National 

Wildlife Disease Program) en Fort Collins, Colorado (contacte a 

Kerri.Pedersen@aphis.usda.gov para una versión actualizada de la hoja de datos) o de reenviar 

las hojas de datos y los reportes de resultados para su inclusión en la base de datos nacional a: 

wslabresults@aphis.usda.gov. 
23

E. Instrucciones para la Hoja de Datos de Vigilancia de TB en Vida Silvestre

1. Registre el nombre del recolector, agencia, teléfono, y dirección de correo electrónico 

en la esquina superior izquierda. 

2. Registre el nombre del sitio de la recolección. Un sitio de recolección se define como el 

refugio, lago, nombre de la propiedad, nombre del establo o cualquier otro nombre 

utilizado por el recolector de muestras para identificar la ubicación. Sea tan específico 

como sea posible. El nombre de la granja del productor también puede ser enlistado 

como el sitio de recolección si las muestras son recolectadas en una lechería o en una 

granja de engorda. 

3. Registre las coordenadas de GPS para el sitio utilizando una unidad de GPS 

configurada a datos WGS84 y a grados decimales. El sitio se define como la ubicación 

general donde las muestras son recolectadas. Por ejemplo, el sitio puede ser la puerta 

frontal de las localidades infectadas, el reservorio, o el refugio. Recolecte un conjunto 

de coordenadas por sitio. 

4. Registre el condado y el estado donde las muestras fueron recolectadas y la fecha de 

recolección en los recuadros correspondientes. La fecha debe ser registrada utilizando 

el formato mes, día, año (mm/dd/aaaa). 

5. Las muestras recolectadas de cada animal deben ser asignadas a un código de barra 

único. Coloque un código de barra en la hoja de datos, uno en cada frasco de formalina, 

uno en cada Ziploc® (con dos Whirl-Paks® adentro), y uno en el tubo Cryovial® de 

suero (si aplica). 

6. Seleccione el recuadro de la especie de la cual se han recolectado las muestras. Si la 

especie es un cérvido o un cánido, especifique qué animal está siendo analizado en el 

espacio junto al recuadro. Especifique la especie que está siendo analizada, si el animal 

no se enlista en la hoja de datos. 

7. Seleccione el recuadro correspondiente a la edad, clase y sexo de cada animal. 

8. Especifique las muestras que estén siendo enviadas para histopatología (en formalina) 

y/o cultivo (en Whirl-Paks® o borato de sodio) chequeando el recuadro junto a la zona 

del cuerpo. 

9. Seleccione el recuadro correspondiente si no se observan lesiones macroscópicas. 

10. Si se recolecta algún tejido con lesiones, especifique qué tejido está siendo enviado y 

describa las lesiones en el recuadro adecuado. Envíe fotografías digitales por correo 

electrónico a la persona de contacto adecuada (ver Comunicación al Enviar Muestras al 

NVSL). Etiquete cualquier fotografía digital con el código de barras de la muestra del 

animal. 

11. En la parte de debajo de la hoja de datos, indique la fecha en que las muestras son 

enviadas al NVSL y el número total de contenedores de muestras que se incluyen en el 

envío (sin importar la especie). 

12. El emisor se define como la persona responsable por enviar las muestras al NVSL para 

su análisis. Si el emisor y el recolector son el mismo, seleccione el recuadro. De no ser 

así, marque el nombre del emisor y proporcione el número de teléfono adecuado. 
24

III. Análisis de Muestras

A. Histopatología

La histopatología es un método rápido para identificar los procesos de enfermedades que 

ocurren en el tejido, y por lo general, toman de 1 a 3 días en completarse. Si la lesión 

microscópica consiste en granulomas que contienen bacterias ácido-resistentes, el caso es 

diagnosticado como micobacteriosis compatible. Este diagnóstico significa que la lesión es 

consistente con la tuberculosis; sin embargo, la especie de bacteria ácido-resistente que está 

causando esta lesión no puede ser determinada utilizando únicamente histopatología. Un 

diagnóstico compatible de micobacteriosis no es un diagnóstico de infección con M. bovis. 

El proceso de analizar las muestras implica que los técnicos examinen y corten cada tejido en 

una submuestra de 2 mm de ancho (tamaño de una moneda). La formalina cambia el color y 

textura de los tejidos. Por lo tanto, resulta crítico que el recolector registre cualquier lesión en 

la “Hoja de Datos de Vigilancia de Tuberculosis Bovina en Vida Salvaje.” Descripciones 

detalladas de las lesiones le ayudarán al técnico del laboratorio a identificar y tomar muestras 

de cualquier lesión pequeña que pudiera obscurecerse por la fijación de la formalina. Las 

submuestras son recolectadas y procesadas, teñidas y montadas sobre laminillas que son 

examinadas por patólogos al día siguiente. 

B. Reacción en Cadena de la Polimerasa 

El análisis de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR, por sus siglas en inglés) se lleva a 

cabo únicamente si la histopatología indica la presencia de bacterias ácido-resistentes y por lo 

general la obtención de resultados toma de 3 a 8 días después de que se completa el análisis de 

histopatología. La prueba se lleva a cabo en tejidos fijados con formalina. Los tejidos que 

permanecen en formalina por más de 7 a 10 días antes de ser procesadas pueden proporcionar 

resultados de pruebas falsos negativos debido a la desnaturalización del DNA; por lo tanto, el 

envío oportuno de las muestras al laboratorio resulta importante. 

El PCR se utiliza para determinar la presencia de material genético del complejo 

Micobacterum tuberculosis (el cual incluye M. bovis, M. tuberculosis, y varias especies más), 

M. avium y M. a. paratuberculosis. Sin embargo, la PCR no detecta todas las demás especies 

de micobacterias. Adicionalmente, un hallazgo negativo por PCR no necesariamente significa 

la ausencia de M. bovis y un resultado positivo no necesariamente significa que el animal 

estuviese en estado infeccioso o que estuviera eliminando a la bacteria. 

C. Cultivo Micobacteriológico

Los tejidos frescos enviados para cultivo de micobacterias son primeramente analizados para 

detectar lesiones visibles en el laboratorio. Los tejidos con lesiones son procesados por 

separado de los tejidos que no presentan lesiones. Si no se observan lesiones, los tejidos 

enviados de cada animal son reunidos utilizando una sección representativa de cada tejido 

enviado. 

Los tejidos son descontaminados con una solución de hidróxido de sodio para retirar 

contaminantes micóticos y bacteriales, seguidos por una inoculación de varios medios de 

cultivo sólidos y líquidos para recuperar cualquier especie de micobacteria que pudiera estar 
25

presente. M. bovis es un microorganismo de lento crecimiento que por lo general demora de 4 a 

8 semanas en crecer. El medio de cultivo es monitoreado semanalmente durante un total de 8 

semanas para detectar casos potencialmente positivos. Se realiza un teñido ácido-resistente si 

se detecta crecimiento sospechoso en cualquier medio de cultivo durante el periodo de 

incubación de 8 semanas. Si se observan bacterias ácido-resistentes, se ordena una prueba 

GenProbe para detectar el complejo M. tuberculosis con resultados disponibles dentro de 3 a 5 

días. Esta prueba GenProbe es un equipo de pruebas comercialmente disponible que identifica 

las bacterias desconocidas como positivas o negativas para el complejo M. tuberculosis. Dado 

que el complejo M. tuberculosis contiene múltiples especies (M. tuberculosis, M. bovis y varias 

más), se requieren más pruebas en todos los casos positivos de GenProbe para identificar las 

bacterias ácido-resistentes como M. bovis. Estas pruebas confirmatorias, llamadas 

spoligotyping, por lo general demoran de 3 a 7 días adicionales para completarse. 

Si se recuperan bacterias ácido-resistentes además de M. tuberculosis, se reporta el resultado de 

las bacterias ácidos resistentes recuperados, que no sean del complejo M. tuberculosis. La 

identificación definitiva de estas bacterias ácido-resistentes, por lo general no se lleva a cabo a 

menos que se hayan realizado los arreglos pertinentes con anterioridad con el laboratorio. En 

estos casos se pueden requerir de 4 a 8 semanas adicionales para identificar micobacterias 

atípicas al nivel de la especie. 

IV. Manejo de Datos

A. Visión General

Todos los datos deben reportarse al Programa Nacional de Enfermedades de la Vida Silvestre 

de la Agencia de Servicios de Vida Silvestre por correo electrónico a 

nwdpdata@aphis.usda.gov. Este tipo de almacenamiento de datos centralizados facilitará la 

identificación de los patrones y pueden ser utilizados para generar reportes, gráficas y mapas. 

El almacenamiento centralizado de datos también servirá como un recurso para proporcionar 

información al público y para informarles a los tomadores de decisiones de las actividades 

relacionadas con la vigilancia de TB en la vida silvestre. 

B. Ingreso de Datos y Responsabilidades

El recolector es responsable por completar toda la información en la hoja de datos (ver 

Apéndice J). Los recolectores deben ingresar sus datos en la hoja de cálculo “Tuberculosis en 

la Recolección de Datos de Vida Silvestre” (“Tuberculosis in Wildlife Data Collection”) y 

luego enviarla por correo electrónico a nwdpdata@aphis.usda.gov cuando las muestras hayan 

sido enviadas al NVSL para su análisis. 

C. Mapeo de Datos y Reportes

Los reportes de los resultados deben reenviarse a wslabresults@aphis.usda.gov para su 

inclusión en la base de datos nacional. Los mapas estarán disponibles para los recolectores a 

solicitud. 
26

Reconocimientos

Instructivo para la Vigilancia de Tuberculosis Bovina en la Vida Silvestre fue desarrollado 

mediante la colaboración conjunta entre los Servicios de Vida Silvestre y Servicios 

Veterinarios de APHIS. Nos gustaría extender nuestro reconocimiento al Departamento de 

Recursos Naturales y Ambiente de Michigan, el Departamento de Recursos Naturales de 

Minnesota, y el Servicio de Investigación Agrícola de USDA por la revisión del manual y por 

proporcionar la consultoría y fotografías de lesiones. 
Apéndice A: Contactos Nacionales de Vigilancia de TB en la Vida Silvestre

Version 1.0 – Febrero 2012 Contactos de Vigilancia Nacional de TB en Vida Silvestre: Página A1

Contactos Nacionales de Vigilancia de TB en la Vida Silvestre

Oficina de la Organización Nombre del Contacto Teléfono Correo electrónico

USDA, APHIS, WS 

(Servicios de Vida Silvestre),

Programa Nacional de 

Enfermedades en Vida 

Silvestre

Tom DeLiberto (970) 266-6088 Thomas.J.DeLiberto@aphis.usda.gov

Tom Gidlewski (970) 266-6350 Thomas.Gidlewski@aphis.usda.gov

Kerri Pedersen (970) 266-6272 Kerri.Pedersen@aphis.usda.gov

USDA, APHIS, VS

Bill Hench (970) 494-7378 Charles.w.Hench@aphis.usda.gov

Kathy Orloski (970) 494-7221 Kathy.A.Orloski@aphis.usda.gov

Alecia Naugle (301) 734-7569 Alecia.L.Naugle@aphis.usda.gov

USDA, APHIS, VS 

(Servicios Veterinarios), 

Cultivo Micobacteriológico

Suelee Robbe-Austerman (515) 337-7388 Suelee.RobbeAusterman@aphis.usda.gov

Doris Bravo 515-337-7388 Doris.M.Bravo@aphis.usda.gov

USDA, APHIS, VS, 

Histopatología & PCR 

(reacción en la cadena de 

polimerasa)

Bruce Thomsen (515) 337-7521 Bruce.V.Thomsen@aphis.usda.gov

Mark Hall (515) 337-7521 Mark.Hall@aphis.usda.gov

USDA, APHIS, VS, Banco 

de Suero Jeff Nelson (515) 337-7966 Jeffrey.T.Nelson@aphis.usda.gov

USDA, APHIS, VS, 

Suministros de Muestreo

Robert Best (515) 337-7530 Robert.O.Best@aphis.usda.gov

Brian Oakland (515) 337-7530 Brian.L.Oakland@aphis.usda.gov
Apéndice B: MSDS para Formalina Amortiguada al 10%

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Formalina Amortiguada al 10%: Página B1

MSDS Hoja de Datos de Seguridad de Materiales

SOLUCIÓN DE FORMALINA NEUTRAL AMORTIGUADA AL 10%

HOJA DE DATOS DE SERGURIDAD DE MATERIALES

Fecha de Emisión:

La siguiente información se considera correcta, pero no se garantiza como tal, ni se presenta como completamente incluyente.

Identificación del Producto

Nombre del Producto: Formalina Neutral Amortiguada al 10%

Código del Producto: PFNBF-180, PFNBF-240, PFNBF-360, PFNBF-1000

Descripción del Producto: Una solución acuosa amortiguada de formaldehido y metanol

Salud 2

Flamabilidad 0

Reactividad 0

Riesgo físico Ninguno 

Sección 1 – Datos de Envío

Nombre del Embarque del DOT 

(Departamento de Transporte):* 

Envíos terrestres no 

regulados

# de teléfono 

para información:

(610) 524-5810

Clase de Riesgo del DOT: No aplica # de Teléfono de 

emergencia:

(800) 424-9300

Identificación del DOT: No aplica Preparado por: P.B.

Sección 2 – Ingredientes Peligrosos / Información de Identidad

COMPONENTES QUÍMICOS # DE CASO % OSHA PEL ACGIH TLV

Formaldehido 50-00-0 3-4% 0.75 ppm 1 ppm STEL

Alcohol Metílico 67-56-1 ~1% 200 ppm 

TWA

200 ppm STEL

Sección 3 – Características Físicas / Químicas

Punto de ebullición: ~100° C Gravedad específica (H2O=1): 1.01

Presión de vapor (mm Hg y Temperatura): 18 a 20° C Tasa de evaporación (alcohol n-butílico=1): 1

Densidad de Vapor: (AIRE=1= 1 Solubilidad en Agua: Completo

 Apariencia y Olor: Solución clara, incolora. Olor característico del formaldehido.

Sección 4 – Datos de Riesgo de Incendio y Explosión

NÚMERO DE EMERGENCIA CON 

ATENCIÓN LAS 24 HORAS

LLAME A CHEMTREC

1-800-424-9300
Apéndice B: MSDS para Formalina Amortiguada al 10%

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Formalina Amortiguada al 10%: Página B2

Punto de Ignición (Método Utilizado): No aplica Límites de Flamabilidad: No aplica

Medio de extinción: químico seco, dióxido de carbono o espuma tipo alcohol. 

Procedimientos Especiales para Combatir Incendios: Utilice aparatos de respiración autónomos y ropa de protección total. 

Riesgos Inusuales de Incendios y Explosivos: La pirolisis liberará componentes tóxicos como monóxido de carbono y formaldehido.

Sección 5- Datos de Reactividad

Estabilidad: Polimeriza lentamente para formar paraformaldehido. Condiciones a evitar: Calor

Incompatibilidad (Materiales para evitar): Oxidantes fuertes, álcalis fuertes, fenol y urea.

Precauciones que se deben tomar en el Manejo y Almacenamiento: Almacenar a temperatura ambiente. No congelar.

Sección 6 – Datos de Riesgos de la Salud

Rutas de entrada ¿Inhalación? ¿Absorción Cutánea? ¿Ingestión?

Sí Sí Sí

¿Carcinogenicidad? ¿NTP? ¿Monografías IARC? ¿Regulado por OSHA?

Sí No Sí Sí

Riesgos de Salud (Agudos y Crónicos): La inhalación puede conducir a la congestión, tos y falta de aire. El contacto frecuente con la 

piel conduce a resequedad y descamación. La ingestión dañará la garganta, el estómago y los intestinos que dan origen a náusea, 

vómito, dolor abdominal y diarrea. Se pueden presentar una baja de presión sanguínea, aborto espontáneo, pérdida de conciencia y 

daño a los riñones. Inhalación de altas concentraciones de vapor (14 ppm) han causado cáncer en animales de laboratorio. El daño 

genético en bacterias ha sido demostrado. 

Condiciones Médicas Generalmente Agravadas por Exposición: la gente que regularmente trabaja con formaldehido requiere 

vigilancia médica frecuente. 

Procedimientos de Emergencia y de Primeros Auxilios: Buscar ayuda médica para mayor tratamiento, vigilancia y soporte de ser 

necesario. 

Contacto con los Ojos: Irrigue inmediatamente con grandes cantidades de agua por al menos 15 minutos. Obtenga atención médica 

inmediatamente. 

Contacto con la piel: Retire la ropa contaminada y enjuague con agua. 

Ingestión: diluya inmediatamente con agua o leche. Induzca el vómito seguido por una lechada de carbón activado. No induzca el 

vómito si el paciente está inconsciente o somnoliento, contacte al médico. 

Inhalación: Retírese al aire fresco. Proporcione respiración artificial de ser necesario. Contacte al médico. 

Todos los otros medios de exposición: Contacte al centro de control de veneno inmediatamente. Prepárese para proporcionar 

información de sustancias peligrosas. 

Sección 7 – Precauciones para el Manejo Seguro y Uso

Pasos a Seguir en Caso de Derrame o Descarga: Absorba con un absorbente adecuado (como toalla de papel) y deseche.

Métodos de Desecho de Residuos: el desecho de formaldehido por lo general está restringido. La incineración es el método 

preferente de desecho. El desecho del agua residual permite en ocasiones que pequeñas cantidades sean desaguadas por el drenaje 

con agua en exceso. Garantice el cumplimiento con todas las regulaciones gubernamentales. 

Sección 8-Medidas de Control

Protección Respiratoria (Especificar el tipo): Recomendado

Ventilación: Utilice ventilación mecánica como una campaña para vapores químicos. 

Guantes de protección: Utilice guantes de hule o de plástico que sean impermeables al formaldehido.

Protección para los ojos: Se recomiendan anteojos de seguridad para laboratorio o productos similares como parte de las buenas 

prácticas de laboratorio.

Otras Prendas de Ropa de Protección y Equipo: Utilice ropa resistente a químicos.

Prácticas de Trabajo Higiénicas: Lávese bien después del manejo de substancias, especialmente antes de comer y fumar. 

EVER SCIENTIFIC INC., NO REALIZA AFIRMACIÓN ALGUNA EN RELACIÓN A LA EXTENSIÓN O EXACTITUD DE ESTA INFORMACIÓN. LOS INDIVIDUOS QUE 

RECIBEN ESTA INFORMACIÓN DEBEN EJERCER SU CRITERIO INDEPENDIENTE AL DETERMINAR SU RELEVANCIA PARA UN PROPÓSITO EN PARTICULAR.

POR CONSIGUIENTE, EVER SCIENTIFIC INC. NO SERÁ RESPONSABLE POR DAÑOS DE CUALQUIER TIPO O NATURALEZA QUE RESULTEN DEL USO DE 

CUALQUIER PARTE DE ESTA INFORMACIÓN. NO SE REALIZAN NINGUNA DECLARACIÓN O GARANTÍA DE NINGÚN TIPO O NATURALEZA, INCLUYENDO DE

FORMA ENUNCIATIVA MÁS NO LIMITATIVA, GARANTÍAS EXPRESAS, GARANTÍAS IMPLICADAS DE COMERCIALIDAD, O GARANTÍAS DE ADECUACIÓN 

PARA UN PROPÓSITO EN PARTICULAR, CON RESPECTO A LA INFORMACIÓN CONTENIDA EN EL PRESENTE O AL PRODUCTO AL QUE SE REFIERE LA 

INFORMACIÓN. 
Apéndice C: MSDS para Borato de Sodio

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Borato de Sodio: Página C1

SIGMA-ALDRICH sigma-aldric.com

Hoja de Datos de seguridad de Materiales

Versión 4.0

Fecha de Revisión 12/03/2010

Fecha de impresión 06/07/2010

1. IDENTIFICACIÓN DEL PRODUCTO Y DE LA COMPAÑÍA

Nombre del producto: Tetraborato de sodio decahidratado

Número del producto: S9640

Marca: Sigma-Aldrich

Compañía: Sigma-Aldrich

3050 Spruce Street

Saint Louis MO 63103

USA

Teléfono: +18003255832

Fax: +18003255052

# de teléfono de emergencia: (314) 776-6555

2. IDENTIFICACIÓN DE RIESGOS

Panorama General de Emergencias

Riesgos de OSHA (Administración de Seguridad y Salud Ocupacional)

Teratogeno, Riesgo Reproductivo

Elementos de etiqueta GHS, incluyendo declaraciones preventivas

Pictograma

Palabra de señalización Peligro

Declaraciones de riesgo:

H303 Podría ser dañino si se ingiere

H360 Podría dañar la fertilidad o al feto

Declaraciones Preventivas

P201 Obtenga instrucciones especiales antes de su uso

P308+P313 Si se expone o le preocupa el riesgo: Obtenga atención o asesoría médica.

Clasificación HMIS

Riesgo de salud: 1

Riesgo crónico de salud: *

Flamabilidad: 0

Riesgos físicos: 0

Clasificación NFPA

Riesgo de salud: 0

Fuego: 0

Riesgo de reactividad: 0

Efectos Potenciales para la Salud

Inhalación Podría ser dañino si se inhala. Podría causar irritación en las vías respiratorias

Piel Podría ser dañino si se absorbe a través de la piel. Podría causar irritación de la piel. 

Ojos Podría causar irritación de los ojos

Ingestión Podría ser dañino si se ingiere. 

3. COMPOSICIÓN/INFORMACIÓN DE LOS INGREDIENTES

Sinónimos Borax Decahidratado

Borato de sodio decahidratado

B4Na2O7 . 10H2O
Apéndice C: MSDS para Borato de Sodio

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Borato de Sodio: Página C2

Fórmula: 

Peso molecular: 381.37 g/mol

___________________________________________________________________________________________________________

4. MEDIDAS DE PRIMEROS AUXILIOS

Recomendaciones Generales: 

Consulte a un médico. Muestre esta hoja de datos de seguridad al médico tratante. Retírese del área de peligro.

Si se inhala: 

Si se inhala, traslade a la persona hacia una zona de aire fresco. Si no está respirando, proporcionar respiración artificial. Consulte a un médico. 

En caso de contacto con la piel:

Lave con jabón y mucha agua. Consulte a un médico. 

En caso de contacto con los ojos:

Enjuague completamente con mucha agua por al menos 15 minutos y consulte a un médico. 

En caso de ingestión:

Nunca le dé nada a una persona inconsciente por la boca. Enjuague con agua. Consulte a un médico. 

5. MEDIDAS DE COMBATE CONTRA INCENDIOS

Medios adecuados de extinción: 

Aplique medidas de extinción que sean adecuadas a las circunstancias locales y al entorno. 

Equipo especial de protección para bomberos:

Utilice un aparato de respiración autónomo para combatir incendios en caso de ser necesario. 

Mayor información:

El producto mismo no se quema. 

6. MEDIDAS DE DESCARGA ACCIDENTAL

Precauciones Personales

Utilice equipo de protección personal. Evite la formación de polvo. Evite la inhalación de polvo. Asegúrese de que existe la ventilación 

adecuada. Evacúe al personal hacia áreas seguras. 

Precauciones Ambientales

Evite mayor fuga o derrame en caso de que sea seguro hacerlo. No deje que el producto ingrese al drenaje. 

Métodos y materiales para contención y limpieza

Recoja y acomode los residuos sin crear polvo. Manténgalos en contenedores adecuados y cerrados para su desecho. 

7. MANEJO Y ALMACENAJE

Precauciones para el manejo seguro

Evite la formación de polvo y aerosoles

Proporcione una ventilación adecuada de los vapores en lugares donde se forma el polvo.

Condiciones para el almacenamiento seguro

Mantenga el contenedor firmemente cerrado en un lugar seco y bien ventilado. 

8. CONTROLES DE EXPOSICIÓN/PROTECCIÓN PERSONAL

Componentes con parámetros de control en el lugar de trabajo. 

Componentes No. de 

caso

Valor Parámetros de 

control

Actualización Base

Tetraborato de 

disodio 

decahidratado

1303-96-4 TWA 2 mg/m3 2005-01-01 Valores Límite del Umbral (TLV, por sus 

siglas en inglés) de ACGIH de E.U

Caso No. No. de EC No. de índice Concentración

Tetraborato de disodio decahidratado

1303-96-4 215-540-4 005-011-01-1 -
Apéndice C: MSDS para Borato de Sodio

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Borato de Sodio: Página C3

Comentarios No clasificable como un carcinógeno humano: los agentes que causan preocupación acerca de que puedan ser 

cancerígenos para los humanos, pero que no pueden ser evaluados de manera concluyente debido a falta de 

datos. En estudios en vitro o de animales, no se proporcionan indicaciones de carcinogenicidad, los cuales son 

suficientes para clasificar al agente en una de las demás categorías. 

Fracción inhalable. Ver Apéndice C, párrafo A. Valores de Límites del Umbral (TLVs) de la Masa de partículas 

inhalable (IPM-TLVs, por sus siglas en inglés) para aquellos materiales que sean peligrosos cuando se depositan 

en cualquier parte de las vías respiratorias. 

Adopción de ACGIH 2005

Se refiere al Apéndice A—Carcinógenos 

STEL 6mg/m3 2005-01-01 Valores Límite del Umbral (TLV por sus 

siglas en inglés) de ACGIH de E.U

No clasificable como un carcinógeno humano: los agentes que causan preocupación acerca de que puedan ser 

cancerígenos para los humanos, pero que no puede ser evaluado de manera concluyente debido a falta de 

datos. En estudios en vitro o de animales, no se proporcionan indicaciones de carcinogenicidad, los cuales son 

suficientes para clasificar al agente en una de las demás categorías. 

Fracción inhalable. Ver Apéndice C, párrafo A. Valores de Límites del Umbral (TLVs) de la Masa de partículas 

inhalable (IPM-TLVs, por sus siglas en inglés) para aquellos materiales que sean peligrosos cuando se depositan 

en cualquier parte de las vías respiratorias. 

Adopción de ACGIH 2005

Se refiere al Apéndice A—Carcinógenos.

Equipo de Protección Personal

Protección respiratoria

Donde la valoración del riesgo muestre que los respiradores de purificación de aire son adecuados, utilice un respirador de partículas que cubra 

toda la cara del tipo N100 (E.U) o cartuchos de respirador tipo P3 (EN 143) como respaldo para los controles de ingeniería. Si el respirador es el 

único medio de protección, utilice un respirador de aire de cara completa. Utilice respiradores y componentes probados y aprobados bajo 

normas gubernamentales apropiadas como NIOSH (US) o CEN (EU). 

Protección de manos. 

Manejo con guantes. 

Protección de ojos

Lentes de seguridad con protectores laterales de acuerdo con EN166

Protección de piel y cuerpo

Elija la protección corporal de acuerdo con la cantidad de concentración de substancias peligrosas en el lugar de trabajo. 

Medidas de higiene

Evite el contacto con la piel, ojos y ropa. Lávese las manos antes de los descansos e inmediatamente después de manejar el producto. 

9. PROPIEDADES FÍSICAS Y QUÍMICAS

Apariencia

Forma Cristalina

Color Blanco

Datos de seguridad

pH 9.2 a 10 g/l

Punto de fusión 62°C (144° F)

Punto de ebullición No hay datos disponibles

Temperatura de ignición No hay datos disponibles

Límite menor de explosión No hay datos disponibles

Límite superior de explosión No hay datos disponibles

Densidad 1.73g/mL a 25° C (77° F)

Solubilidad del agua 38.1 g/l a 20 °C (68° F)-completamente soluble 
Apéndice C: MSDS para Borato de Sodio

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Borato de Sodio: Página C4

10. ESTABILIDAD Y REACTIVIDAD 

Estabilidad química

Estable bajo condiciones recomendables de almacenamiento.

Condiciones que se deben evitar

No hay datos disponibles

Materiales que se deben evitar

Agentes oxidantes fuertes, agentes reductores fuertes

Productos de descomposición peligrosos

Productos peligrosos de descomposición formados bajo condiciones de fuego—óxidos de borano/borón, óxidos de sodio

11. INFORMACIÓN TOXICOLÓGICA

Toxicidad grave

LD50 Oral-rat-4,500-5,000 mg/kg

LD50 piel- conejo- 10.000 mg/kg

Corrosión/irritación de la piel

No hay datos disponibles 

Serio daño al ojo/irritación del ojo

No hay datos disponibles

Sensibilización respiratoria o de la piel

No hay datos disponibles 

Mutagenicidad de la célula del germen

No hay datos disponibles 

Carcinogenicidad

IARC: Ningún componente de este producto presente a niveles mayores o iguales a 0.1% es identificado como probable. 

NTP: Ningún componente de este producto presente a niveles mayores o iguales a 0.1% es identificado como conocido o como carcinógeno 

anticipado por NTP. 

OSHA: Ningún componente de este producto presente a niveles mayores o iguales a 0.1% es identificado identifica como carcinógeno o como 

carcinógeno potencial por OSHA. 

Toxicidad reproductiva

Fetotoxicidad

Se presume toxicidad reproductiva en humanos

Toxicidad específica del órgano objetivo—exposición única (GHS)

No hay datos disponibles 

Toxicidad específica del órgano objetivo—exposición repetida (GHS)

No hay datos disponibles

Riesgo de aspiración

No hay datos disponibles 

Efectos potenciales de salud

Inhalación Puede resultar dañino si se inhala. Puede causar irritación de las vías respiratorias. 

Ingestión Puede resultar dañino si se ingiere

Piel Puede resultar dañino si se absorbe a través de la piel. Puede causar irritación de la piel

Ojos Puede causar irritación de ojos
Apéndice C: MSDS para Borato de Sodio

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Borato de Sodio: Página C5

Signos y Síntomas de Exposición

Los estudios de alimentación en ratas, ratones y perros, en altas dosis, han demostrado los efectos sobre la fertilidad y testículos. Los estudios 

con el ácido bórico químicamente relacionado en ratas, ratones y conejos, a altas dosis, demuestran los efectos en desarrollo sobre los fetos, 

incluyendo la pérdida en el peso fetal y variaciones esqueléticas menores. Las dosis administradas excedieron muchas veces aquellas a las que 

los humanos estarían normalmente expuestos. Los estudios epidemiológicos en humanos no muestran incrementos en las enfermedades 

pulmonares en poblaciones ocupacionales con exposiciones crónicas al polvo del ácido bórico y al polvo del borato de sodio. Un estudio 

epidemiológico reciente bajo condiciones de exposición ocupacional normal al polvo de borato no arrojó ningún efecto en la fertilidad. 

Información Adicional

RTECS: VZ2275000

12. INFORMACIÓN ECOLÓGICA

Toxicidad al pescado LC50- Carassius auratus (pez dorado) – 178 mg/l – 72h

Toxicidad a la daphnia y a otros invertebrados acuáticos EC50 – Daphnia magna (pulga de agua) – 1,085 – 1,402 mg/l – 48 h

Toxicidad a algas IC50 – Desmodesnus subspicatus (alga verde) – 158 mg/l -96 h 

Persistencia y degradabilidad

No hay datos disponibles 

Potencial Bioacumulativo

No hay datos disponibles 

Movilidad en la tierra

No hay datos disponibles

Valoración PBT y vPvB

No hay datos disponibles 

Otros efectos adversos

No hay datos disponibles 

13. CONSIDERACIONES DE DESECHO

Producto

Observe todas las regulaciones ambientales federales, estatales y locales. Contrate servicios profesionales certificados en desecho de 

residuos para desechar este material. 

Paquetes contaminados

Deséchelos como productos no utilizados.

14. INFORMACIÓN DE TRANSPORTE

DOT (Departamento de Transportes de E.U)

Bienes no peligrosos

IMDG

Bienes no peligrosos

IATA

Bienes no peligrosos

15. INFORMACIÓN REGULATORIA

RIESGOS DE OSHA (Administración de la Seguridad y Salud Ocupacional)

Teratógeno, Riesgo reproductivo

Estatus de DSL

Todos los componentes de este producto se encuentran en la lista canadiense de DSL 

Componentes SARA302

SARA 302: Ningún químico en este material está sujeto a los requerimientos de SARA, Título III, Sección 302. 
Apéndice C: MSDS para Borato de Sodio

Versión 1.0-Febrero 2012 MSDS para Borato de Sodio: Página C6

Componentes SARA 313

Sara 313: Este material no contiene ningún componente químico con números conocidos de CAS que excedan los niveles de reporte del umbral 

(De Minimis) establecidos por SARA, Título III, Sección 313.

Riesgos SARA 311/312

Riesgo Crónico de Salud

Componentes a los que se tiene derecho a conocer en Massachusetts

Tetraborado de disodio decahidratado No. de Caso Fecha de Revisión

1303-96-4 1993-D4-24

Componentes a los que se tiene derecho a conocer en Pensilvania

Tetraborado de disodio decahidratado No. de Caso Fecha de Revisión

1303-96-4 1993-D4-24

Componentes a los que se tiene derecho a conocer en Nueva Jersey

Tetraborado de disodio decahidratado No. de Caso Fecha de Revisión

1303-96-4 1993-D4-24

Componentes de la Prop. 65 de California

Este producto no contiene ningún químico conocido para el Estado de California que cause cáncer, defectos de nacimiento, o cualquier otro 

daño reproductivo. 

16. INFORMACIÓN ADICIONAL

Más información

Copyright 2010 Sigma-Aldrich Co. Licencia otorgada para hacer copias ilimitadas en papel para uso interno únicamente. La información 

anterior se considera correcta pero no pretende ser completamente incluyente y únicamente deberá ser utilizada como guía. La 

información en el presente documento se basa en el estado actual de nuestros conocimientos y se aplica al producto con relación a 

precauciones de seguridad adecuadas. No representa ninguna garantía sobre las propiedades del producto. Sigma-Aldrich Co., no será 

responsable por cualquier daño que resulte del manejo o del contacto con el producto anterior. Ver reverso de la factura o recibo de 

empaque para consultar los términos y condiciones adicionales de la venta. 
Apéndice D: Necropsia de un Mapache

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Mapache: Página D1

MAPACHE (Procyon lotor)

Para comenzar la necropsia: 

1. Coloque al animal sobre su espalda.

2. Corte la piel a los largo de la línea media ventral desde la barbilla hasta la cola. 

3. Desarticule las extremidades cortando los músculos así como las articulaciones de cadera y 

hombros flexionando las extremidades a los lados. 

Extracción de los nódulos linfáticos de la cabeza y tejidos: 

Extienda el cuello del mapache y palpe la curvatura de la mandíbula. Los nódulos linfáticos 

submandibulares están justo debajo de la superficie de la piel en la base de la mandíbula. Los 

nódulos linfáticos submandibulares están relacionados con las glándulas salivales y pueden ser 

fácilmente confundidos. Tenga cuidado al recolectar el nódulo linfático y no corte demasiado 

profundo al cortar la piel. 
Apéndice D: Necropsia de un Mapache

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Mapache: Página D2

Después de extraer los nódulos linfáticos submandibulares, corte desde la curvatura de la 

mandíbula a lo largo del costado de la tráquea, separando cuidadosamente los músculos para 

evitar daños al nódulo linfático retrofaríngeo. Retire ambos nódulos linfáticos retrofaríngeos 

medios. 

No es necesario recolectar los nódulos linfáticos parótidos de los mapaches porque son pequeños 

y difíciles de encontrar en animales más pequeños que los cérvidos. 

Extracción de las tonsilas: 

Para extraer las tonsilas, libere la lengua con un corte entre los lados y la punta de la lengua y la 

mandíbula. Retraiga la lengua hacia atrás. Las amígdalas pueden verse en el techo del paladar de 

la boca en cualquiera de los lados. Extraiga ambas tonsilas cuidadosamente. 
Apéndice D: Necropsia de un Mapache

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Mapache: Página D3

Extracción de los nódulos linfáticos torácicos y tejidos:

Exponga la cavidad torácica cortando las costillas a lo largo de la vértebra y rotar la caja torácica 

hacia arriba y por encima del cadáver. Alternativamente, la caja torácica puede ser cortada a lo 

largo del esternón y a lo largo de la espalda para ser retirada. Examine visualmente y palpe los 

pulmones para verificar la firmeza, bultos, o lesiones. También busque lesiones o anormalidades 

en la pared del pecho o en cualquier otro lugar de la cavidad torácica. Si tiene duda, envíe el 

tejido al laboratorio para obtener una interpretación concluyente. 

Identifique donde la tráquea se ramifica a la derecha e izquierda de los bronquios. Los nódulos 

linfáticos traqueobronquiales se localizan donde el tallo principal de los bronquios se ramifica de 

la tráquea. El arco aórtico rodea al nódulo linfático traqueobronquial izquierdo. 

El nódulo linfático mediastínico se localiza al costado de la unión entre los bronquios y el 

corazón. Al sostener el corazón, voltéelo y presione con su dedo entre las dos divisiones—el 

nódulo linfático mediastínico deberá emerger. 
Apéndice D: Necropsia de un Mapache

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Mapache: Página D4

Extracción de los nódulos linfáticos de la cavidad abdominal: 

Los nódulos linfáticos mesentéricos son los únicos de la cavidad abdominal que se envían 

rutinariamente al laboratorio. Exponga el contenido del abdomen cortando la capa muscular que 

cubre la cavidad abdominal de la caja torácica a la pelvis. Los nódulos linfáticos mesentéricos 

están localizados dentro del delgado y opaco mesenterio que suspende el intestino. Los nódulos 

linfáticos mesentéricos son fácilmente identificables en el mesenterio entre los pliegues del 

intestino delgado donde los vasos sanguíneos convergen. También hay varios nódulos linfáticos 

mesentéricos más pequeños entre el intestino grueso y los riñones. 
Apéndice E: Necropsia de un Venado y Otro Cérvidos

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Venado: Página E1

VENADO (Familia Cervidae)

Para comenzar la necropsia: 

1. Coloque el venado sobre su costado. 

2. Corte la piel a lo largo de la línea media ventral desde la barbilla hasta la cola. 

3. Desarticule las extremidades cortando los músculos así como las articulaciones de la cadera y 

del hombro flexionando las extremidades hacia los lados. 

Extracción de los nódulos linfáticos de la cabeza y tejidos: 

Palpe la curvatura de la mandíbula y la laringe y realice un corte entre las dos. 

Los nódulos linfáticos submandibulares están asociados con las glándulas salivales mandibulares 

localizadas justo debajo de la piel cerca de la curvatura de la mandíbula. 
Apéndice E: Necropsia de un Venado y Otro Cérvidos

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Venado: Página E2

Después de extraer los nódulos linfáticos submandibulares, corte a través de la tráquea enfrente 

de la laringe y busque el nódulo linfático enfrente de las glándulas salivales. Retire ambos 

nódulos linfáticos retrofaríngeos. 

El tejido salival rodea ambos nódulos linfáticos retrofaríngeos y submandibulares y puede ser 

fácilmente confundido con nódulos linfáticos. Tenga cuidado al identificar y recolectar 

únicamente los nódulos linfáticos y no la glándula salival. Los nódulos linfáticos son de color 

gris sólido y no están lobulados; las glándulas salivales adyacentes están lobuladas. 
Apéndice E: Necropsia de un Venado y Otro Cérvidos

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Venado: Página E3

Los nódulos linfáticos parótidos se localizan dentro de la glándula parótida salival entre el oído y 

el ojo, justo enfrente y debajo del canal externo del oído. Localice y extraiga ambos nódulos 

linfáticos parótidos en cualquiera de los lados de la cabeza. Palpe la leve hendidura de la sien 

para comenzar el corte. 

Extracción de las tonsilas: 

Para extraer las tonsilas, abra la mandíbula y jale la lengua hacia atrás. Las tonsilas pueden ser 

vistas en el techo de la boca en cualquiera de los lados. Extraiga ambas tonsilas cuidadosamente. 
Apéndice E: Necropsia de un Venado y Otro Cérvidos

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Venado: Página E4

Extracción de los nódulos linfáticos torácicos y tejidos: 

Exponga la cavidad torácica cortando las costillas a lo largo del esternón y la columna vertebral. 

Examine visualmente y palpe los pulmones para verificar su firmeza, bultos, o lesiones. También 

busque lesiones en la pared del pecho o en cualquier otro lugar en la cavidad torácica para 

detectar anormalidades. Si tiene duda, envíe el tejido y permita que el laboratorio decida. 

Identifique la bifurcación de la tráquea a la derecha e izquierda de los bronquios. Los nódulos 

linfáticos traqueobronquiales se localizan a los costados izquierdo y derecho donde se ramifican 

los bronquios. El arco aórtico rodea el nódulo linfático traqueo bronquial izquierdo. 

El nódulo linfático mediastínico se localiza en el costado ventral de la unión de los bronquios y 

el corazón. Al sostener el corazón, voltéelo y presione su dedo entre las dos divisiones—el 

nódulo linfático mediastínico deberá emerger. 
Apéndice E: Necropsia de un Venado y Otro Cérvidos

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Venado: Página E5

Extracción de los nódulos linfáticos de la cavidad abdominal: 

Exponga el contenido abdominal cortando la capa muscular que cubre la cavidad abdominal. Los 

nódulos linfáticos mesentéricos son los únicos de la cavidad abdominal que se envían 

rutinariamente al laboratorio. Los nódulos linfáticos mesentéricos se localizan entre el intestino 

delgado y el ciego en el mesenterio entre los pliegues del intestino delgado. Los nódulos 

linfáticos mesentéricos por lo general son alargados en un arco o una cresta, y generalmente 

aparecen en una serie de nódulos linfáticos. Utilice el ciego como marca como la terminación 

del intestino delgado y trabajar hacia atrás. 
Apéndice F: Necropsia de un Coyote 

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Coyote: Página F1

Coyote (Canis latrans) 

Para comenzar la necropsia: 

1. Coloque al animal sobre su espalda y corte la piel a lo largo de la línea media ventral desde la 

barbilla hasta la cola. 

2. Desarticule las extremidades cortando los músculos así como las articulaciones de la cadera y 

de los hombros y flexionando las extremidades a los lados.

Extracción de los nódulos linfáticos de la cabeza y tejidos: 

Extienda el cuello del coyote y palpe la curvatura de la mandíbula. Los nódulos linfáticos 

submandibulares se encuentran justo debajo de la superficie de la piel en la base de la mandíbula. 

Tenga cuidado de no cortar demasiado profundo al desollar la mandíbula para evitar cortar los 

nódulos linfáticos submandibulares. 

Después de extraer los nódulos linfáticos submandibulares, corte desde la curvatura de la 

mandíbula a lo largo del costado de la tráquea, separando cuidadosamente los músculos para 

exponer los nódulos linfáticos retrofaríngeos sin dañarlos. 
Apéndice F: Necropsia de un Coyote 

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Coyote: Página F2

No es necesario recolectar los nóduos linfáticos parótidos de los coyotes porque son pequeños y 

difíciles de encontrar en animales más pequeños que los cérvidos. 

Extracción de las tonsilas:

Para extraer las tonsilas, abra la mandíbula y jale la lengua hacia atrás. Las tonsilas pueden verse 

en el techo de la boca en cualquier lado del paladar blando. Extraiga ambas tonsilas 

cuidadosamente. 

Extracción de los nódulos linfáticos torácicos y tejidos:

Exponga la cavidad torácica cortando las costillas a lo largo de las vértebras. Examine 

visualmente y palpe los pulmones para verificar la firmeza, bultos o lesiones. También busque 

lesiones en la pared del pecho o en cualquier otro lugar de la cavidad torácica para detectar 

anormalidades. Si tiene duda, envíe el tejido y deje que el laboratorio tome la decisión. 

Identifique dónde se bifurca la tráquea en el bronquio izquierdo y derecho. Los nódulos 

linfáticos traqueobronquiales se localizan donde los bronquios se ramifican. El arco aórtico rodea 

el nódulo linfático traqueobronquial izquierdo. 
Apéndice F: Necropsia de un Coyote 

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Coyote: Página F3

El nódulo linfático mediastínico se localiza en el lado ventral de la unión de los bronquios con el 

corazón. Al sostener el corazón, voltéelo y presione su dedo entre las dos divisiones y el nódulo 

linfático mediastínico deberá emerger. 
Apéndice F: Necropsia de un Coyote 

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Coyote: Página F4

Extracción de los nódulos linfáticos de la cavidad abdominal: 

Exponga el contenido del abdomen cortando la capa muscular que cubre la cavidad abdominal. 

Los nódulos linfáticos mesentéricos son los únicos que se envían rutinariamente de la cavidad 

abdominal. Existen múltiples nódulos linfáticos mesentéricos en medio del mesenterio del 

intestino delgado. Son fácilmente identificables en el mesenterio entre los pliegues del intestino 

delgado donde convergen los vasos sanguíneos. Existen varios nódulos linfáticos mesentéricos 

más pequeños en el mesenterio entre el intestino grueso y los riñones. 
Apéndice G: Necropsia de una Zarigüeya

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Zarigüeya: Página G1

Zarigüeya (Didelphis virginiana)

Para comenzar la necropsia: 

1. Coloque al animal sobre su espalda y corte la piel a lo largo de la línea media ventral desde la 

barbilla hasta la cola. 

2. Desarticule las extremidades cortando los músculos, así como las articulaciones de cadera y 

hombros, flexionando las extremidades a los lados.

Extracción de los nódulos linfáticos de la cabeza y tejidos: 

Extienda el cuello de la Zarigüeya y palpe la curvatura de la mandíbula. Los nódulos linfáticos 

submandibulares se encuentran justo debajo de la superficie de la piel en la base de la mandíbula. 

Tenga cuidado de no cortar demasiado profundo al cortar la piel. 
Apéndice G: Necropsia de una Zarigüeya

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Zarigüeya: Página G2

Después de extraer los nódulos linfáticos submandibulares, corte desde la curvatura de la 

mandíbula a lo largo del costado de la tráquea, separando cuidadosamente los músculos para 

evitar dañar los nódulos linfáticos retrofaríngeos medios. Extraiga ambos nódulos linfáticos 

retrofaríngeos medios.

No es necesario recolectar los nódulos linfáticos parótideos de las zarigüeyas porque son 

pequeños y difíciles de encontrar en animales más pequeños que los cérvidos. 

Extracción de las tonsilas: 

Para extraer las tonsilas, afloje la lengua cortándola por los lados y jalándola hacia atrás. Las 

tonsilas pueden verse donde la lengua se conecta con el techo del paladar blando. Extraiga ambas 

tonsilas cuidadosamente. 
Apéndice G: Necropsia de una Zarigüeya

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Zarigüeya: Página G3

Extracción de los nódulos linfáticos torácicos y tejidos: 

Exponga la cavidad torácica cortando las costillas a lo largo del esternón. Examine visualmente y 

palpe los pulmones para verificar la firmeza, bultos o lesiones. Recolecte muestras para cultivo e 

histopatología, y busque lesiones en la pared del pecho o en cualquier otro lugar de la cavidad 

torácica para detectar anormalidades. Si tiene duda, envíe el tejido a análisis y permita que el 

laboratorio decida. 

Identifique el área donde la tráquea se bifurca en el bronquio izquierdo y derecho. Los nódulos 

linfáticos traqueo bronquiales se localizan donde los bronquios se ramifican. El arco aórtico 

rodea al nódulo linfático traqueo bronquial izquierdo. 

El nódulo linfático mediastínico se localiza en el costado ventral de la unión de los bronquios y 

el corazón. Al sostener el corazón, voltéelo y presione su dedo entre las dos divisiones y el 

nódulo linfático mediastínico deberá emerger. 
Apéndice G: Necropsia de una Zarigüeya

Versión 1.0-Febrero 2012 Necropsia de Zarigüeya: Página G4

Extracción de los nódulos linfáticos de la cavidad abdominal: 

Exponga el contenido abdominal cortando el músculo que cubre la cavidad abdominal desde la 

caja torácica hasta la pelvis. Los nódulos linfáticos mesentéricos son los únicos de la cavidad 

abdominal que se envían al laboratorio. Se localizan dentro del delgado y opaco mesenterio que 

suspende el intestino, y se identifican fácilmente en el mesenterio entre los pliegues del intestino 

delgado donde los vasos sanguíneos convergen. También existen varios nódulos linfáticos 

mesentéricos entre el intestino grueso y los riñones. 
Apéndice H: Necropsia de un Jabalí

Versión 1.0- Febrero 2012 Necropsia de Jabalí: Página H1

Jabalí (Sus scrofa)

Para comenzar la necropsia: 

1. Coloque al animal de costado y corte la piel a lo largo de la línea media ventral desde la 

barbilla hasta la cola. 

2. Disloque las extremidades cortando los músculos así como las articulaciones de la cadera y el 

hombro flexionando las extremidades a los lados. 

Extracción de los nódulos linfáticos de la cabeza y tejidos: 

El jabalí tiene más grasa que las demás especies en vida silvestre; por lo tanto, los nódulos 

linfáticos pueden encontrarse a mayor profundidad que en otras especies. Palpe la curvatura de la 

mandíbula y encuentre la base del canal auditivo. El nódulo linfático parótido se localiza en el 

costado caudal de la línea entre la curvatura de la mandíbula y la base del canal auditivo. 

Los nódulos linfáticos submandibulares se localizan en la cara interior de la curvatura de la 

mandíbula. Son multilobulares y su aspecto es muy diferente al de las otras especies. Los 

nódulos linfáticos en los jabalíes son frecuentemente multilobulares y parecen múltiples nódulos 

linfáticos en lugar de uno. 
Apéndice H: Necropsia de un Jabalí

Versión 1.0- Febrero 2012 Necropsia de Jabalí: Página H2

Después de extraer los nódulos linfáticos submandibulares, corte hacia el foramen magno donde 

se articula la cabeza con el cuello. Los nódulos linfáticos retrofaríngeos son más caudales que en 

otras especies y están directamente detrás del proceso paramastoideo (estructuras huesudas en el 

cráneo). Extraiga ambos nódulos linfáticos retrofaríngeos medios. 
Apéndice H: Necropsia de un Jabalí

Versión 1.0- Febrero 2012 Necropsia de Jabalí: Página H3

Extracción de las tonsilas: 

Para extraer las tonsilas, corte ambos costados de la mandíbula para liberar la lengua. Jale la 

lengua hacia atrás, en dirección a la cola. Las tonsilas conforman casi la totalidad del techo del 

paladar blando directamente detrás del paladar duro y son planas, grandes y con finos orificios. 

Extraiga ambas amígdalas cuidadosamente. 

Extracción de los nódulos linfáticos torácicos y tejidos: 

Exponga la cavidad torácica cortando las costillas a lo largo del esternón. Examine visualmente y 

palpe los pulmones para verificar su firmeza, ver si presenta bultos, o lesiones. Recolecte 

muestras para cultivo e histopatología si se observa cualquier tejido anormal, y busque lesiones 

en la pared del pecho o en cualquier otro lugar en la cavidad torácica para detectar anomalías. Si 

tiene duda, envíe el tejido al laboratorio para decidir. 

Identificar en donde se bifurca la tráquea en el bronquio derecho e izquierdo. Los nódulos 

linfáticos traqueobronquiales se localizan donde los bronquios se ramifican. El arco aórtico rodea 

el nódulo linfático traqueobronquial y por lo general es el más evidente de los dos. Un método 

alterno para encontrar los nódulos linfáticos traqueobronquiales es cortar la tráquea desde arriba 

hacia abajo hasta donde los bronquios se bifurcan. 
Apéndice H: Necropsia de un Jabalí

Versión 1.0- Febrero 2012 Necropsia de Jabalí: Página H4
Apéndice H: Necropsia de un Jabalí

Versión 1.0- Febrero 2012 Necropsia de Jabalí: Página H5

Los nódulos linfáticos mediastínicos son los más fáciles de encontrar con el animal recostado 

sobre su lado izquierdo. Levante los pulmones y podrá identificar los nódulos linfáticos 

mediastínicos como una serie de pequeños nódulos entre el esófago y el nervio vago por debajo 

de los pulmones. 

Extracción de los nódulos linfáticos de la cavidad abdominal: 

Exponga el contenido del abdomen cortando la capa muscular que cubre la cavidad abdominal 

desde la caja torácica hasta la pelvis. Los nódulos linfáticos mesentéricos son los únicos de la 

cavidad abdominal en ser rutinariamente enviados al laboratorio. Se localizan dentro del delgado 

y opaco mesenterio que suspende el intestino. Sin embargo, si el cerdo tiene mucha grasa, serán 

difíciles de ver. 
Apéndice I: Lesiones de TB por Especie

Versión 1.0-Febrero 2012 Lesiones: Página I1

Lesiones de Cérvidos
Apéndice I: Lesiones de TB por Especie

Versión 1.0-Febrero 2012 Lesiones: Página I2

Lesiones de Coyote

Lesiones de Jabalíes
Apéndice I: Lesiones de TB por Especie

Versión 1.0-Febrero 2012 Lesiones: Página I3

Lesiones de Zarigüeyas
Apéndice J: Ejemplo de Hoja de Datos de Vigilancia de TB en Vida Silvestre

Versión 1.0-Febrero 2012 Hoja de Datos de TB: Página J1
Apéndice K: Ejemplo de la Forma 10-4

Versión 1.0-Febrero 2012 Ejemplo de la Forma 10-4: Página K1

Número OMB de aprobación de la forma 0579-0090

DEPARTAMENTO DE AGRICULTURA DE LOS EU

SERVICIO DE INSPECCIÓN DE PLANTAS Y ANIMALES

LABORATORIOS NACIONALES DE SERVICIOS VETERINARIOS

AMES, IOWA, 50010

(515) 663-7212

ENVÍO DE ESPECÍMENES

INSTRUCCIONES: Utilice una forma por separado por cada especie 

y por cada propietario-corredor. Consulte las instrucciones para 

completar la FORMA VS 10-4 para verificar las definiciones 

(elemento 12) y las instrucciones identificación (elemento 20)

PAGINA

 1 DE 1

1. NOMBRE DEL EMISOR

Clark Kent, NVSL ID – COKEN

2. NOMBRE DEL PROPIETARIO

NA

DIRECCIÓN (calle, ciudad, estado, y código postal)

1234 Superman Hwy

Kryptonite, CO 80320

CIUDAD ESTADO

3. UBICACIÓN DE LOS ANIMALES

No. De Teléfono No. de Fax. 

970-266-1234 970-266-1235

CONDADO

Múltiple (ver hojas de datos) 

ESTADO

CO

4. Método de pago (coloque una “x” al elemento que aplique información)

NO. DE CUENTA DEL USUARIO: _______________________________ MC/visa No. _______

CHEQUE/GIRO POSTAL ANEXO (a nombre de USDA en dólares estadounidenses)

FECHA DE VENCIMIENTO:

5. TAMAÑO DEL REBAÑO

NA

8. EXAMEN REQUERIDO

Cultivo de TB – 3 animales

Histopatología—3 animales

9. RECOLECTADO POR

USDA-WS

6. NO. EN EL REBAÑO AFECTADOS 10. FECHA DE RECOLECCIÓN

7. NO. EN EL REBAÑO MUERTOS 11. AUTORIZADO POR: 

AVIC

12. PROPÓSITO DEL ENVÍO (seleccione uno con “x”) (ver instrucciones para obtener las definiciones)

Diagnóstico general Vigilancia Importación Interestatal

Diagnóstico FAD EP Investigación en desarrollo Exportación Movimiento

Diagnóstico Intralab. NVSI Evaluación del reactivo x TB

13. PAÍS DE ORIGEN/DESTINO

E.U.

14. NÚMERO DE REFERENCIA

15. PRESERVACIÓN (coloque una “x” a los elementos que aplique)

Ninguno Paquete de hielo x Hielo seco Formalina Borax Alcohol Otro (especifique)

16. ESPECÍMENES ENVIADOS: (coloque una “x” a los elementos que aplique) 

Sangre Heces Parásito Suero Tejido Ave 

completa

Otro (especifique)

Cultivo Alimento Planta Tierra Orina Feto 

Extracto Leche Semen Hisopo Agua

17. Número total de 

Especímenes enviados

18. ESPECIES O FUENTE (seleccione uno con una “x”) 

Ganado Cabra Ambiente Pollo Bisonte Venado Otro (especifique)

Cerdo Caballo Reactivo Pavo Perro Ciervo (ANEXO)

Oveja Burro Ave casera Gato Pescado

19. Número de Animales 

Analizados

20. IDENTIFICACIÓN (Ver instrucciones) IDENTIFICACIÓN (Ver instrucciones)

ID de la Muestra ID del 

Animal/Raza

Edad Género ID de la Muestra ID del 

Animal/Raza

Edad Género

VER ANEXO

21. DATOS ADICIONALES (historial, signos clínicos, hallazgos post mortem, comentarios, diagnóstico tentativo, 

etc. Utilice hojas adicionales de ser necesario). 

22. FIRMA DEL EMISOR Y FECHA

No. de Accesión del NVSL

ÚNICAMENTE PARA USO DE NVSL

CONDICIÓN PRIORIDAD DISTRIBUCIÓN RECIBIDO POR

FORMA 10-4 de VS (Julio 97)