Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

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Manual de Viveros para la 

Producción de Especies Forestales 

en Contenedor 

Volumen Cuatro 

Fertilización y Riego

 

Capítulo 2 

Riego y Manejo del Agua 

Thomas D. Landis, Especialista en Viveros, Región Oeste, 

Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, 

Dasonomía Estatal y Privada, Portland, Oregon, E.U.A. 

 

Landis, T.D. 1989. Mineral nutrients and fertilization. In: 

Landis, T.D.; Tinus R.W.; McDonald, S.E.; Barnett, J.P. The 

Container Tree Nursery Manual, Volume 4. Agric. Handbk. 

674. Washington, DC: U.S. Department of Agriculture, 

Forest Service: 1-67. 
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Contenido 

Página 

4.2.1 La Importancia del Agua en el Cultivo de Plantas 74 

4.2.2 Estado del Agua en Especies Forestales Producidas en Contenedor 75 

4.2.2.1 Contenido de humedad 75 

4.2.2.2 Potencial hídrico 75 

4.2.2.3 Potencial hídrico de la planta 76 

4.2.2.4 Potencial hídrico del medio de crecimiento 81 

4.2.3 Factores que Afectan la Disponibilidad de Agua en los Contenedores 83 

4.2.3.1 Características del sustrato artificial 83 

Elevada capacidad de retención de humedad 83 

Movimiento del agua en los sustratos artificiales 83 

4.2.3.2 Efectos del contenedor 84 

4.2.3.3 Pérdida de humedad de las plantas en contenedor 85 

4.2.4 Cantidad y Calidad del Agua de Riego 87 

4.2.4.1 Cantidad del agua requerida para viveros que producen en contenedor 87 

4.2.4.2 Calidad del agua 87 

Efectos de las sales en la calidad del agua de riego 87 

Efectos de la salinidad en el crecimiento de las plantas 89 

Plagas y enfermedades en el agua de riego 93 

Contaminación con plaguicidas 93 

Análisis de la calidad del agua 93 

Tratamientos correctivos para el agua de riego 94 

Temperatura del agua 98 

4.2.5 Tipos de Sistemas de Riego 99 

4.2.5.1 Sistemas de riego en la parte superior 99 

Sistemas de riego móviles 99 

Aspersores fijos en la parte superior 101 

Aspersores basales fijos 102 

4.2.5.2 Principios en el diseño de sistemas de riego fijos 102 

4.2.5.3 Probando la eficiencia de los sistemas de riego 105 

4.2.5.4 Sistemas de riego automáticos 107 

4.2.6 Supervisando el Agua en los Contenedores. Determinando Cuándo Regar 109 

4.2.6.1 Revisión visual y táctil 109 

4.2.6.2 Mediciones del peso del contenedor 109 

Desarrollo de una escala de pesos para los contenedores a través de la experiencia 111 

Desarrollo de una escala de pesos de los contenedores usando el potencial mátrico del 

sustrato 111 

4.2.6.3 Supervisando el potencial hídrico de la planta con la cámara de presión 112 

4.2.7 El Riego como Tratamiento de Cultivo-Determinando qué tanto Regar 114 

4.2.7.1 Regando durante la fase de establecimiento 114 

4.2.7.2 Regando durante la fase de crecimiento rápido 114 

4.2.7.3 Regando durante la fase de endurecimiento 115 

4.2.7.4 Regando como protección ante heladas 116 

4.2.8 Disposición del Agua de Riego Residual 118 

4.2.8.1 Eficiencia del riego con aspersores 118 

4.2.8.2 Manejando el agua residual de un vivero 118 

4.2.9 Conclusiones y Recomendaciones 120 

4.2.10 Referencias 121 
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4.2.1 La Importancia del Agua en el Cultivo de Plantas 

La importancia del agua para el cultivo de especies 

forestales en contenedor, no debe ser 

sobreenfatizada. El agua está considerada como el 

principal factor limitativo del crecimiento en los 

ecosistemas naturales, y es uno de los factores 

promotores del crecimiento más importantes en los 

ecosistemas artificiales, como los invernaderos. 

La relevancia ecológica del agua refleja su 

importancia fisiológica, y casi cualquier proceso 

vegetal está directa o indirectamente afectado por 

el agua. Como ejemplo, la fotosíntesis disminuye 

drásticamente conforme la tensión hídrica aumenta 

(fig. 4.2.1). 

El agua afecta el cultivo de las plantas en cuatro 

formas principales (Kramer, 1983): 

1 Es el mayor constituyente de una planta, 

comprendiendo del 80 al 90% del peso fresco. 

2 Es el "solvente universal", proporcionando 

transporte de nutrientes dentro de la planta. 

3 Es un reactivo bioquímico en muchos procesos 

vegetales, incluyendo la fotosíntesis. 

4 Es esencial para mantener la turgencia en las 

células vegetales, promoviendo la expansión 

celular y el crecimiento vegetal. 

Figura 4.2.1 Incrementando la tensión hídrica (la cual es medida por el incremento de valores más negativos del potencial 

hídrico de la planta), se reduce la fotosíntesis a tasas diferentes, dependiendo de las características de las especies 

(modificado de Cleary, 1971).
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4.2.2 Estado del Agua en Especies Forestales Producidas en Contenedor

La comprensión de los aspectos físicoquímicos de 

las relaciones hídricas en las plantas, no es 

absolutamente necesaria para el manejo exitoso de 

un programa de riego en los viveros forestales. Sin 

embargo, los viveristas deberán familiarizarse con 

los términos que son utilizados universalmente para 

describir las relaciones hídricas de las plantas. El 

estado del agua en las plantas puede ser descrito 

en varias formas distintas: contenido de humedad, 

potencial hídrico, y movimiento del agua. 

Probablemente las mediciones más útiles del 

estado del agua en las plantas, son el contenido de 

humedad y el potencial hídrico (Spomer, 1985). 

4.2.2.1 Contenido de humedad. 

El contenido de humedad de una planta puede ser 

visualizado como una ecuación. En cualquier 

momento, el contenido de agua de la planta refleja 

un balance integrado entre la absorción a través de 

las raíces, y las pérdidas por transpiración del 

follaje hacia la atmósfera (McDonald y Running, 

1979) (fig. 4.2.2). Ritchie (1984), describe el ciclo 

del agua como un modelo simple de entrada-salida: 

W = A - T + S 

Donde: W = contenido de humedad de la planta 

A = absorción 

T = transpiración 

S = almacenamiento 

El contenido de humedad de la planta está en un 

estado de cambio durante el día, cuando las 

pérdidas por transpiración a través del follaje 

usualmente exceden la tasa de absorción de agua 

a través de las raíces. Esta diferencia entre la 

absorción de agua y la pérdida de humedad, crea 

tensión hídrica en la planta. La tensión hídrica de 

la planta es una condición fisiológica normal 

durante las horas del día; no obstante, si se permite 

que esta tensión alcance niveles extremos durante 

largos periodos, la tasa de crecimiento de la planta 

declina, y eventualmente ésta muere. En los 

viveros forestales que producen en contenedor, la 

tensión hídrica de las plantas se mantiene a niveles 

bajos durante la etapa de cultivo, mediante el uso 

de riego para estimular el crecimiento. Aunque la 

tensión hídrica en la planta ha sido descrita de 

muchas diferentes maneras, la forma más útil para 

describir el estado del agua en la planta involucra la 

energía del agua o potencial. 

4.2.2.2 Potencial hídrico. 

Una discusión completa del potencial hídrico (PH) 

va más allá del objetivo de este manual, pero la 

comprensión de los conceptos básicos es de 

utilidad para el viverista. La siguiente discusión del 

PH nos ayudará a familiarizar al lector con los 

términos y unidades relacionadas que serán 

empleados en el presente capítulo (cuadro 4.2.1). 

Aunque la terminología relacionada con el potencial 

hídrico puede parecer complicada al principio, 

representa la mejor manera para describir el estado 

del agua en las plantas, pues los principios básicos 

y las unidades se mantienen iguales para el medio 

de crecimiento, la planta y la atmósfera (Spomer, 

1985) (figura 4.2.2). Los componentes del 

Potencial Hídrico, del potencial mátrico en el suelo 

y del vapor del agua en la atmósfera, pueden ser 

descritos en las mismas unidades. Una ventaja 

práctica de este sistema es que las diferentes 

influencias que afectan el uso y disponibilidad del 

agua, como es la salinidad, pueden ser descritos 

en términos de Potencial Hídrico (potencial 

osmótico en el cuadro 4.2.1). 

Los potenciales hídricos se describen en términos 

de energía - la capacidad para hacer trabajo. La 

mejor medida es el Potencial Hídrico 

(frecuentemente representado con la letra griega 

psi), el cual es la diferencia de energía entre el 

potencial químico del agua en la planta, el medio 

de crecimiento o la atmósfera, comparada con la 

del agua pura, a una temperatura y presión 

estándar (Kramer, 1983). El Potencial Hídrico del 

agua pura está definido como cero, y el potencial 

del agua en una planta o en la solución del medio 

de crecimiento, está reducido por factores que 

limitan esta capacidad para hacer trabajo; los 

Potenciales Hídricos en la naturaleza, por lo tanto, 

siempre son números negativos (figura 4.2.2). El 

Potencial Hídrico se expresa mejor en unidades de 

presión como los bares (sistema métrico decimal), 

las unidades internacionales estándar actualmente 

aceptadas, denominadas megapascales (MPa), o 

las libras por pulgada cuadrada (sistema inglés), 

equivalentes dimensionalmente a las unidades de 

potencial químico. 

Como se mencionó inicialmente, una de las 

ventajas de usar el Potencial Hídrico, es que éste 

puede ser separado en sus componentes: 

potencial osmótico (PO), potencial de presión (PP), 

potencial mátrico (PM), y potencial de gravidez 
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(PG) (cuadro 4.2.1). Los componentes del 

Potencial Hídrico en una planta o en el sustrato, 

difieren a causa de las propiedades únicas de cada 

sistema. Algunos componentes, como es el efecto 

de gravidez (PG), son insignificantes en las 

plántulas o en los contenedores pequeños, 

mientras que otros componentes, como el PP, son 

no significativos en el medio de crecimiento (cuadro 

4.2.1). 

4.2.2.3 Potencial hídrico de la planta. 

Existen dos términos comúnmente usados para 

describir el estado del agua en las plantas; la 

mayoría de los científicos prefieren al potencial 

hídrico de la planta (PHP), mientras que muchos 

viveristas y reforestadores, están más 

familiarizados con la tensión hídrica de la planta 

(THP). Los dos términos, son idénticos en valor 

absoluto: El PHP siempre es expresado en 

términos negativos, mientras que la THP siempre 

es un número positivo (por ejemplo, un valor de 

PHP de -1.5 MPa es igual a un valor de 1.5 MPa en 

THP). Una comparación de las unidades y 

términos descriptivos para el PHP y para la THP, 

se proporciona en el cuadro 4.2.2. Observe que 

una tasa relativamente alta del Potencial Hídrico 

(por ejemplo –1.0 ), es "menos negativo" que un 

valor relativamente menor (por ejemplo, -3.0). 

El Potencial Hídrico de la planta, es más práctico 

que la tensión hídrica de las plantas para 

propósitos de manejo de viveros, porque el 

Potencial Hídrico puede ser usado para describir 

las relaciones hídricas entre suelo-planta-aire (fig. 

4.2.2), mientras que la THP solamente es útil en la 

descripción del estado del agua dentro de las 

plantas. Por tanto, para mantener consistencia, y 

para minimizar posibles confusiones, en esta 

publicación serán empeladas las unidades y los 

términos de PH. El concepto de "tensión hídrica" 

está bien establecido en la literatura de viveros, y 

en la “jerga diaria”. Sin embargo, esto no deberá 

causar problemas, y aún el término "tensión" puede 

ser empleado operativamente porque el PHP y la 

THP son equivalentes dimensionalmente, y 

solamente difieren en signo (cuadro 4.2.2). 

El PHP, está compuesto de dos componentes 

principales: el potencial osmótico (PO), y el 

potencial de presión (PP) (cuadro 4.2.1). La 

interrelación de estos factores está ilustrada en la 

figura 4.2.3, la cual muestra cómo cambia el PHP 

con el contenido de humedad de la planta (Hofler, 

1920; citado por Ritchie, 1984). Cuando una planta 

está totalmente turgente, el PHP vale cero, porque 

el PP es positivo, e iguala al PO, el cual es 

negativo. Conforme la planta pierde humedad a 

través de la transpiración, también pierde turgencia 

(se marchita), y el PP declina en valor hasta que 

alcanza el cero, punto en el cual la planta está 

completamente flácida, y el PHP iguala el PO 

(figura 4.2.3). Este punto de turgencia cero, 

algunas veces denominado "punto de marchitez", 

es peligroso para la planta desde un punto de vista 

fisiológico: el crecimiento cesa y el daño celular 

puede ocurrir, incluso si esta condición prevalece 

por un largo tiempo, puede sobrevenir la muerte. 
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Figura 4.2.2 El agua es llevada a lo largo de un gradiente de potencial hídrico que está conducido por pérdidas 

evapotranspiracionales, desde niveles altos en el medio de crecimiento (menos negativo), a través de la planta, a niveles 

más bajos (más negativos) en la atmósfera (modificado de McDonald y Running, 1979). 
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Cuadro 4.2.1 Términos, definiciones, y unidades usadas para describir las relaciones hídricas de las plantas 

Potencial hídrico (PH). Medida del estado de la energía del agua, el cual usualmente está expresado en 

unidades de presión, y está compuesto por los siguientes factores: 

PH = PO + PP + PM + PG 

PO = potencial osmótico, el componente producido por solutos disueltos (siempre negativo, ver figura 

4.2.3). 

PP = potencial de presión, el componente producido en el interior de las paredes celulares en las plantas, 

o debido al peso del agua, o a la presión del aire en el suelo (siempre es positivo, ver figura 4.2.3). 

PM = potencial mátrico, el componente producido por la atracción adhesiva de moléculas de agua a 

superficies, o adhesión y cohesión en capilares pequeños (siempre es negativo). 

PG = potencial de gravidez, el componente producido por la fuerza de gravedad (siempre es negativo). 

Potencial hídrico de la planta (PHP). El estado de la energía del agua dentro de la planta: 

(el PM es pequeño en las plantas bien hidratadas; el PG es insignificante en las plántulas pequeñas) 

PHP = PO + PP 

Potencial hídrico del medio de crecimiento (PHMC). Estado de la energía del agua dentro del medio de 

crecimiento: 

(el PP y el PG son insignificantes en contenedores pequeños) 

PHMC = PM + PO 

Tensión hídrica de la planta (THP). Es una forma de describir el estado del agua de la planta que tiene el 

mismo valor absoluto que el potencial hídrico, pero de signo contrario: 

THP = valores positivos de PHP. 

Unidades:

Tanto el potencial hídrico y la tensión hídrica de la planta, comúnmente son expresados en unidades de 

presión, prefiriéndose los megapascales (MPa) en el sistema internacional: 

1 MPa = 10 bars ~ 10 atm ~ 150 psi. 

Cuadro 4.2.2 Comparación de unidades y términos 

descriptivos para el potencial hídrico de la planta (PHP), 

y para la tensión hídrica de la planta (THP). Observe que 

ambos tienen los mismos valores absolutos, pero el PHP 

está medido en unidades negativas, mientras que los 

valores de THP son positivos. 

Potencial hídrico de la 

planta (PHP) 

Tensión hídrica de la 

planta (THP) 

Unidades Calificación HR* Unidades Calificación

Mpa Bars 

relativa 

Mpa Bars

Relativa 

0.0 0.0 Elevado Húmedo 0.0 0.0 Bajo 

-0.5 -5.0 0.5 5.0 

-1.0 -10.0 Moderado 1.0 10.0 Moderado 

-1.5 -15.0 1.5 15.0 

-2.0 -20.0 Bajo Seco 2.0 20.0 Elevado 

* HR = Humedad relativa 

Figura 4.2.3 Las interrelaciones entre el potencial 

hídrico de la planta PHP y sus componentes; el potencial 

osmótico PO y el potencial de presión PP, cambian con 

respecto al contenido de humedad de la planta desde la 

turgencia hasta el punto de marchitez (Ritchie, 1984). 
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Figura 4.2.4 Patrones diarios del potencial hídrico de la 

planta para una especie bajo dos ambientes diferentes: 

elevado potencial hídrico del medio de crecimiento y baja 

demanda evaporativa (A), bajo potencial hídrico del 

medio de crecimiento, y elevada demanda evaporativa 

(B) (Adaptado de McDonald y Running, 1979). 

El PHP es dinámico, y cambia con el tiempo, 

conforme la humedad del suelo y la demanda 

atmosférica cambian. Los patrones diarios típicos 

para el potencial hídrico de la planta son 

proporcionados en la figura 4.2.4 para dos 

combinaciones distintas de humedad en el medio 

de crecimiento y de demanda atmosférica. En un 

día típico, considerando un sustrato bien irrigado 

(A, en la fig. 4.2.4), una planta comienza a 

transpirar tan pronto como el sol aparece, y su PHP 

disminuye (aumenta la tensión) hasta que los 

estomas se cierran, punto en el cual los niveles de 

PHP se mantienen estables. Alrededor del ocaso, 

el PHP comienza a aumentar conforme declina la 

demanda atmosférica, y la planta recarga su 

contenido de humedad con el agua del sustrato. La 

segunda curva (B, en la fig. 4.2.4), muestra el 

patrón de PHP para una planta bajo una elevada 

demanda evaporativa y en un sustrato 

moderadamente seco. El PHP comienza a un nivel 

inicial bajo, porque la planta no ha sido capaz de 

recargar completamente su abasto de humedad por 

la noche y, por tanto, su PHP declina a menores 

niveles (elevada tensión) durante la tarde. Si este 

patrón permanece, pueden desarrollarse niveles de 

tensión hídrica dañinos para la planta. 

El PHP puede ser medido a través de varias 

técnicas, pero la más práctica en un vivero es la 

cámara de presión (fig. 4.2.5) (nota del traductor: 

también conocida como cámara de Scholander). 

La técnica para operar este instrumento, está bien 

descrita por McDonald y Running (1979): 

Corte una pequeña ramilla o acícula y colóquela 

en la cámara, con el extremo (corte) 

sobresaliendo de la tapa. Una analogía útil, es 

imaginar la columna de agua en la planta como 

una banda elástica. Conforme la tensión hídrica 

aumenta en la planta, esta banda elástica se 

contrae. Cuando la ramilla o la acícula se corta 

de la planta, la tensión en la banda elástica 

(columna de agua), origina que el agua se 

retraiga de la superficie cortada. Mediante la 

lenta aplicación de presión de gas al extremo 

contrario, el agua es forzada a retroceder a la 

superficie de corte en la ramilla. Cuando la 

presión de gas es exactamente igual a la 

tensión (PHP) que se está ejerciendo sobre la 

columna de agua, el agua aparecerá en la 

superficie de corte; la lectura de la escala de la 

cámara de presión en ese preciso instante 

indica el PHP. 

Han sido desarrolladas nuevas técnicas para la 

medición del PHP. Dixon y Tyree (1984), describen 

un higrómetro que puede ser fijado al tallo de 

plantas leñosas, el cual es capaz de medir 

directamente el PHP. El higrómetro es una 

pequeña cámara de metal, la cual alberga unos 

sensores termopares minúsculos, que se puede 

fijar al tronco durante varias semanas. Una 

limitante de esta técnica es que el diámetro óptimo 

del tronco es de aproximadamente 8 a 10 mm (0.31 

a 0.39 pulgadas), valor superior al diámetro de la 

mayoría de las plantas empleadas en la 

reforestación. Aunque se ha desarrollado en la 

actualidad investigación básica, las modificaciones 

que en el futuro se harán a esta tecnología podrían 

producir una técnica para el seguimiento continuo 

del PHP en un vivero en operación. 
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(5) Cuando el agua aparece en 

la superficie cortada, se registra 

la presión (THP) de la cámara. 

(1) La columna de agua en una planta 

está casi siempre bajo tensión, como si una 

banda elástica fuera tensionada dentro 

de la planta. 

(4) La presión en la 

cámara es aumentada 

lentamente mientras se 

observa la superficie de 

corte de la muestra. 

 

(2) Cuando una muestra es 

cortada, esta columna de agua es 

interrumpida, y a causa de su baja 

tensión retrocede dentro de la muestra, justo 

como los extremos de una banda elástica 

cortada. 

 

Figura 4.2.5. La cámara de presión ofrece una medida directa del PHP o de la THP (cortesía de PMS Instrument Company, 

Corvallis, OR, E.U.A.).

(3) La muestra es colocada en la cámara, con la superficie 

de corte sobresaliendo de una cavidad. La presión es 

entonces aumentada en el interior de la cámara, y la columna 

de agua dentro de la muestra es entonces forzada hacia la 

superficie de corte. La presión requerida para hacer esto, es

igual a la tensión de la columna de agua al momento que la 

muestra fue cortada. 
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4.2.2.4 Potencial hídrico del medio de 

crecimiento. 

A causa de las grandes variaciones en la densidad, 

espacio poroso, y tamaño y distribución de los 

poros, el agua en el medio de crecimiento se 

describe mejor mediante potenciales, más que con 

base en el peso. Un sustrato con textura fina, 

usualmente contiene más agua en peso que otro 

de textura gruesa, pero menos agua estará 

disponible para la absorción por la planta, y para el 

crecimiento (Bunt, 1976). El potencial hídrico, por 

otro lado, da una indicación del agua disponible 

para el cultivo de las plantas, independientemente 

de la textura del sustrato. 

El potencial del agua en la solución del sustrato, es 

denominado potencial hídrico del medio de 

crecimiento (PHMC), y está compuesto de dos 

partes: El PO, que refleja la influencia de sales 

disueltas, y el PM, el cual mide la atracción de las 

moléculas de agua por las superficies y poros 

pequeños en el sustrato (cuadro 4.2.1). El PO de 

la solución del medio de crecimiento aumenta (se 

hace más negativo) conforme el contenido de 

humedad del suelo disminuye debido a la 

evaporación o la transpiración, y la salinidad de la 

solución del medio de crecimiento aumenta -una 

reducción de 50% en el contenido de humedad del 

suelo duplicará, aproximadamente, la 

concentración de sales (Bunt, 1976) (Los efectos 

de la elevada salinidad en el cultivo de plantas son 

discutidos en la sección 4.2.4.2). 

El PM refleja la energía con la cual el agua es 

retenida por fuerzas mátricas en el sustrato, y está 

relacionado con el tamaño de los poros en el medio 

de crecimiento. El volumen de los poros en el 

sustrato, es función del tamaño de las partículas y 

de su arreglo, y está compuesto de aire y agua, 

que cambian en proporción inversa uno con 

respecto al otro. Después del riego, el exceso de 

agua es drenado fuera del contenedor por 

gravedad, dejando el sustrato esencialmente 

saturado; este punto es denominado "capacidad del 

contenedor", y difiere del término tradicional 

capacidad de campo, debido al efecto del 

contenedor (ver sección 4.3.2.2). A capacidad de 

contenedor, el PM es muy elevado (la tensión 

hídrica es muy baja), y el agua rápidamente está 

disponible para la planta. Conforme el sustrato 

pierde humedad a través de la evaporación y la 

transpiración, los poros grandes se drenan primero, 

y son llenados con aire. Sin embargo, los poros 

nunca se drenan por completo, pues una película 

de agua cada vez más delgada rodea a las 

partículas del medio de crecimiento. Tanto más 

delgada sea esta película, será menor el PM 

(mayor la tensión hídrica) y menor humedad estará 

disponible para la planta. Los poros más pequeños 

son los últimos en perder su humedad. 

Eventualmente, el contenido de humedad del 

medio (y el PM) será tan bajo, que la planta es 

incapaz de obtener agua tan rápido como la pierde 

por transpiración, y ésta comenzará a perder 

turgencia y a marchitarse. El punto de marchitez 

permanente, ocurre cuando la planta es incapaz de 

recargar sus reservas de humedad en la noche, y 

se mantiene flácida (Bunt, 1976). 

El PHMC y el PHP están muy relacionados; el 

patrón del PHP para una planta en un sustrato 

húmedo (elevado PHMC), pero que no es regado, 

se muestra en la figura 4.2.6. Conforme el sustrato 

se seca, el PHMC disminuye gradualmente. La 

curva normal del PHP ocurre cada día (fig. 4.2.4A), 

pero el PHP disminuye a un nivel mínimo cada día, 

porque la planta no es capaz de recargar su abasto 

de humedad del sustrato cada vez más seco. El 

PHP se hace más y más negativo, hasta que por fin 

la planta es incapaz de recuperarse. 

La mayoría de los instrumentos miden sólo el PM, e 

ignoran el PO, el cual puede ser un componente 

significativo en los sustratos fuertemente 

fertilizados, como los empleados en invernadero 

(fig. 4.2.7). El PM puede ser medido directamente 

con una membrana de presión, en un laboratorio de 

análisis, o con un tensiómetro en el vivero. El 

mejor método para medir el PHMC, parece ser la 

técnica de psicrómetro termopar de alambre 

pequeño. Estos pequeños psicrómetros, están 

contenidos en bulbos porosos y son fijados a 

conductores eléctricos; el PHMC puede ser medido 

directamente, con un microvoltímetro (Kramer, 

1983). Estos psicrómetros, pueden colocarse 

dentro del sustrato, en el contenedor, y el PHMC se 

mide fácil y simultáneamente. Esta técnica no se 

había usado operativamente en ninguno de los 

viveros que respondieron la encuesta, pero su uso 

puede ser promisorio como una forma para revisar 

la humedad del suelo en contenedores (Las formas 

comunes para la supervisión del riego, son 

discutidas en la sección 4.2.6). 
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Figura 4.2.6 La relación entre el potencial hídrico de la 

planta (PHP) y el potencial hídrico del medio de 

crecimiento (PHMC), en un contenedor sin riego: el 

patrón diario del PHP disminuye gradualmente conforme 

el medio de crecimiento (sustrato) se seca, y el PHMC 

disminuye (adaptado de Slatyer, 1967). 

Figura 4.2.7 La fertilización pesada del sustrato en el 

contenedor, produce un potencial osmótico significativo 

(PO), que aumenta con los contenidos de humedad 

bajos. El PO es la diferencia entre el potencial hídrico 

del medio de crecimiento (PHMC) y el potencial mátrico 

(PM) (Adaptado de Newman, 1966). 
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83

4.2.3 Factores que Afectan la Disponibilidad de Agua en los Contenedores 

4.2.3.1 Características del sustrato artificial. 

El uso de "suelo artificial", compuesto de materiales 

como la turba de musgo y la vermiculita, afecta 

muchas propiedades del agua en los medios de 

crecimiento, como es la capacidad de retención de 

humedad, y el movimiento del agua. 

Elevada capacidad de retención de humedad. 

La mayoría de los medios de crecimiento usados 

en los viveros forestales que producen en 

contenedor, como la mezcla de turba de musgo y 

vermiculita, tienen la propiedad de absorber y 

retener un mayor porcentaje de agua, en 

comparación con los suelos minerales de los 

viveros que producen a raíz desnuda. La forma 

más precisa de ilustrar esta diferencia, es con una 

curva de retención de humedad del suelo, que 

muestra la relación entre la humedad gravimétrica 

del suelo, y el PM. Las curvas de retención de 

humedad en el suelo, son desarrolladas en un 

laboratorio edafológico usando un aparato de placa 

de presión; pueden desarrollarse curvas diferentes 

para cada tipo de suelo o de medio de crecimiento, 

porque las relaciones cambian significativamente 

con base en las características físicas, 

particularmente textura y estructura. La figura 4.2.8 

muestra dos curvas de retención de humedad para 

suelo de textura fina de un vivero que produce a 

raíz desnuda, y para un sustrato a partes iguales 

de turba-vermiculita; observe que el sustrato a base 

de turba-vermiculita retiene considerablemente más 

agua en todo el intervalo del PM. Las propiedades 

del sustrato de turba-vermiculita, son discutidas 

más adelante, en el capítulo relativo a medios de 

crecimiento, en el volumen dos de esta serie. 

Movimiento del agua en los sustratos 

artificiales. La tasa de infiltración y la 

conductividad capilar del sustrato de turbavermiculita, cambia con el contenido de humedad. 

Cuando el agua de riego es aplicada a la superficie 

de un contenedor, la tasa a la cual es absorbida 

dentro del medio de crecimiento, es denominada 

tasa de infiltración. Esta, para el sustrato de turbavermiculita, es relativamente elevada, pues la 

mayoría de los medios de crecimiento tienen una 

buena porosidad. Sin embargo, si a un medio se le 

permite secarse, la tasa de infiltración puede ser 

severamente restringida, pues las partículas secas 

de turba repelen el agua y se vuelven hidrofóbicas 

(Furuta, 1978). Los agentes humectantes 

(surfactantes) están disponibles comercialmente, y 

pueden ser aplicados a los sustratos para 

incrementar la tasa de infiltración; estos productos 

químicos son detergentes que rompen la tensión 

superficial del agua, y provocan que ésta penetre el 

sustrato mucho más fácilmente. Los agentes 

humectantes con frecuencia son empleados 

durante el periodo de endurecimiento, para 

restaurar el sustrato después de que ha sido 

secado para inducir tensión hídrica en la planta (ver 

sección 4.2.7.3). 

Figura 4.2.8 La comparación entre las curvas de 

retención de humedad del suelo típico (silty loam) 

empleado en un vivero que produce a raíz desnuda, y del 

sustrato de turba-vermiculita, muestra que el sustrato 

artificial retiene considerablemente más agua en todos 

los potenciales mátricos. 

La conductividad capilar se refiere a la tasa del 

movimiento del agua en el medio de crecimiento, 

especialmente en respuesta a la absorción por la 

planta. Durante el riego, la conductividad capilar 

del sustrato de turba-vermiculita es elevada en 

dirección hacia abajo, debido a la gravedad, pero 

después del riego, la conductividad capilar puede 

ser limitada en varios sustratos porosos (Furuta, 

1978). Hanan et al. (1978), estudió la conductividad 

capilar de dos sustratos con diferentes texturas, y 

encontró que las plantas cultivadas en mezclas 

muy porosas, podrían experimentar severa tensión 

hídrica, aunque el agua fuera exprimida 

manualmente. El movimiento del agua en el 

sustrato puede ser incrementado usando 

componentes que proporcionen una mezcla de 

tamaños diferentes de partículas, y asegurándose 

de que el sustrato esté firmemente apisonado 

dentro del contenedor durante el llenado y 

acomodo. No obstante, el uso de sustratos que 

estén muy finos, o excesivamente compactados, 

puede originar condiciones de saturación de 

humedad, con serias reducciones en el crecimiento 

de la planta. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

84

4.2.3.2 Efectos del contenedor. 

El agua en el contenedor se comporta de manera 

diferente que el agua en el suelo no confinado; este 

hecho deberá entenderse por los viveristas porque 

afecta el manejo del agua, y las prácticas de riego 

resultantes. La aplicación de una cantidad dada de 

agua a una cantidad fija de sustrato en un 

contenedor pequeño, produce un contenido de 

humedad diferente, diferente movimiento de la 

humedad, y por tanto una diferente respuesta de la 

planta, que la misma cantidad de agua aplicada al 

mismo volumen de suelo no confinado (Furuta, 

1978). 

Cuando el riego es aplicado a un contenedor lleno, 

el agua se percola hacia abajo, por la fuerza de 

gravedad, hasta que alcanza el fondo del 

contenedor; en este punto, el flujo de agua cesa 

porque la fuerza de gravedad es menor que la de 

las fuerzas de adhesión y cohesión combinadas 

con la columna de agua. El drenaje sólo se 

produce en el fondo del contenedor cuando la 

fuerza debida a la altura de la columna de agua es 

suficiente para superar estas fuerzas de adhesión y 

cohesión. El significado biológico de este patrón de 

drenaje es que siempre existe una zona con 

sustrato saturado en la interfase sustrato/aire, en el 

fondo del contenedor (Furuta, 1978). La 

profundidad de esta capa saturada, está en función 

de la textura del sustrato, como se presenta en la 

figura 4.2.9. La profundidad de esta zona saturada 

será mayor en los sustratos de textura fina, en 

comparación con los de textura gruesa, porque las 

fuerzas de capilaridad son mayores en los poros 

más pequeños. 

La altura del contenedor determina la proporción 

del sustrato con drenaje libre que éste contiene, 

asumiendo que la textura del sustrato sea la misma 

(Whitcomb, 1984). Un contenedor con 10.2 cm (4 

pulgadas) de altura, tendrá la misma profundidad 

de sustrato saturado, que uno con 25.4 cm (10 

pulgadas) de altura, pero el contenedor más 

pequeño tendrá proporcionalmente menos sustrato 

de drenado libre (fig. 4.2.10). Este efecto de 

"capilaridad adicional" es independiente del 

diámetro del contenedor o de su forma. Para un 

contenedor dado, la única forma de modificar la 

profundidad de esta capa saturada, es cambiar la 

textura del sustrato a una mezcla más gruesa 

(Furuta, 1978). La presencia de esta franja 

saturada tiene serias implicaciones para la 

aireación del medio de crecimiento; Bunt (1976) 

muestra que cambiando la altura del contenedor, 

de 5 a 20 cm (2 a 7.9 pulgadas) aumentó el 

volumen de aire en el contenedor, de 4 a 8% (fig. 

4.2.11). 

Los contenedores que son empleados en muchos 

viveros forestales, tienen un diámetro relativamente 

pequeño y un volumen limitado. El diámetro 

pequeño es importante operativamente porque es 

extremadamente difícil distribuir el riego 

uniformemente entre contenedores, lo cual acarrea 

una considerable variación en el contenido de 

humedad del sustrato. Este problema de 

distribución se hace aún más crítico cuando las 

plantas crecen y su follaje comienza a interceptar el 

riego antes de que el agua alcance la parte 

superior del contenedor. La intercepción del follaje 

es particularmente seria para las especies 

latifoliadas. A causa de que los contenedores 

pequeños tienen un volumen 

correspondientemente más pequeño de sustrato, 

éstos tienen reservas de humedad limitadas, y 

requieren de frecuentes riegos, especialmente en 

los momentos de elevadas pérdidas 

evapotranspirativas (Furuta, 1978). 

Figura 4.2.9 El efecto de capilaridad del agua en el 

sustrato, está influenciado por el tamaño promedio de los 

poros del mismo. Un sustrato con textura fina, con poros 

promedio pequeños (tubo delgado), puede retener más 

agua que un sustrato con textura gruesa (tubo grueso) 

(modificado de Whitcomb, 1984). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

85

4.2.3.3 Pérdida de humedad de las plantas en 

contenedor. 

Junto con el agua en exceso que drena por 

gravedad, existen dos formas de pérdida de agua 

en contenedores de paredes sólidas en los viveros 

forestales que producen en contenedor: la 

evaporación de la superficie del sustrato, y la 

transpiración de la planta. Las tasas de 

evapotranspiración están relacionadas con la 

entrada de energía, principalmente radiación solar 

en un invernadero. La evapotranspiración aumenta 

con las temperaturas elevadas, bajas humedades 

relativas, e incremento en el movimiento del aire. 

Las pérdidas de agua por la planta son mayores, 

por tanto, cuando las temperaturas elevadas 

conllevan a la abertura de ventilas en un 

invernadero cerrado. Las elevadas temperaturas y 

vientos desecantes, pueden también aumentar el 

uso del agua en estructuras de ambiente semicontrolado. Aunque han sido desarrolladas 

muchas ecuaciones para predecir 

matemáticamente la cantidad de agua perdida a 

partir de factores climáticos en cultivos agrícolas, 

éstos resultan muy imprecisos para efectos 

prácticos en el manejo del riego en los viveros 

forestales que producen en contenedor. 

Las pérdidas evapotranspirativas en los viveros que 

producen en contenedor, pueden ser divididas en 

dos periodos de tiempo generales. La 

evapotranspiración de la superficie del sustrato 

representa la mayor pérdida en la etapa temprana 

de crecimiento (fig. 4.2.12A). Sin embargo, 

conforme las plántulas crecen la transpiración foliar 

es responsable de una gran proporción de las 

pérdidas de humedad, porque el sistema radical 

puede extraer agua del sustrato; al mismo tiempo, 

el follaje sombrea la superficie del sustrato, lo cual 

reduce la evaporación (Furuta, 1978). Este cambio 

en el uso del agua afecta su estado en el medio de 

crecimiento, y las prácticas de riego resultantes. 

Durante la germinación y la emergencia, el sustrato 

se seca sólo en la capa superficial, mientras que 

después en la etapa de crecimiento, la humedad 

del sustrato será mermada en todo el contenedor 

(fig. 4.2.12). Las diferentes especies de plantas 

usan el agua a diferentes tasas; Ballard y Dosskey 

(1985), hallaron que plantas de Pseudotsuga 

menziesii (Douglas fir) usan más agua que 

cualquiera de las dos especies de Tsuga (hemlock) 

(fig. 4.2.13). Las prácticas de riego que son 

empleadas para manejar estos modelos 

cambiantes del uso del agua, son discutidas en las 

secciones 4.2.6 y 4.2.7. 

Figura 4.2.10 La profundidad de la capa saturada del 

sustrato, en el fondo del contenedor, es 

proporcionalmente mayor en los contenedores pequeños, 

cuando se tiene el mismo tipo de sustrato (modificado de 

Whitcomb, 1984). 

Figura 4.2.11 El volumen relativo de espacios con aire 

(porosidad de aireación) en un sustrato, aumenta con la 

altura del contenedor (Bunt, 1976). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

86

Figura 4.2.12 Existen dos etapas de pérdida de 

humedad por evapotranspiración en los viveros que 

producen en contenedor. La evaporación (A), es la 

fuerza primaria durante la germinación y la emergencia 

de la plántula, pero la transpiración (B), se hace 

dominante después de que la raíz ocupa el contenedor. 

Figura 4.2.13 Las diferentes especies de plantas 

absorben agua a diferentes tasas (Ballard y Dosskey, 

1985). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

87

4.2.4 Cantidad y Calidad del Agua de Riego 

Puesto que el agua es considerada el factor 

biológico más importante que controla el 

crecimiento de la planta, la cantidad y 

especialmente la calidad del agua de riego es el 

factor individual ambiental más importante en la 

operación de viveros que producen en contenedor. 

Un vivero exitoso debe contar con un 

abastecimiento permanente de agua de buena 

calidad para el riego, disponible a lo largo del ciclo 

de cultivo. Gartner (1981), establece la importancia 

de la calidad del agua en la elección del sitio para 

establecer el vivero, y discute las características de 

diferentes fuentes de agua de riego. Tanto la 

cantidad como la calidad del agua de riego, de 

fuentes potenciales, deberán ser verificados del 

todo antes del establecimiento de un vivero (Los 

criterios para la elección del sitio son discutidos en 

el volumen uno de esta serie). 

4.2.4.1 Cantidad del agua requerida para 

viveros que producen en contenedor. 

Básicamente hay dos fuentes de agua de riego 

para abastecer los viveros forestales: agua 

subterránea y agua superficial. Ambas fuentes han 

sido empleadas exitosamente, aunque los arroyos, 

reservorios o lagos, son fácilmente contaminables 

por agentes fitopatógenos o semillas de malezas. 

La primera consideración en la selección de la 

fuente de agua de riego, es asegurarse que estará 

suficientemente disponible durante todo el ciclo de 

cultivo, para todos los usos posibles en el vivero. 

La disponibilidad de agua con frecuencia es un 

problema al inicio de la primavera y al final del 

otoño, si el riego es requerido para protección ante 

heladas en complejos de cultivo a la intemperie, o 

en áreas de endurecimiento de la planta. La 

disponibilidad de agua superficial puede ser más 

variable que la de pozo, aunque la confiabilidad de 

cualquier fuente de agua de riego deberá ser bien 

investigada antes de que el vivero sea construido. 

La cantidad de agua necesaria para producir 

especies forestales en contenedor, depende de 

muchos factores, como el clima, el tipo de 

estructura, el tipo de sistema de riego, el sustrato, y 

las características de la planta. Matthews (1983), 

calculó que 1 000 plantas de coníferas en bloques 

de poliestireno expandido (Styroblock 2®, con 41 

cm3 = 2.5 pulgadas cúbicas de capacidad), 

requieren de 45.4 litros (12 galones) de agua por 

semana, dependiendo del tipo de sistema de riego. 

En el vivero Mt. Sopris, en Colorado, EUA, un 

cultivo de 1 000 plantas de coníferas en celdas 

individuales (Ray Leach Single Cell® ), con 164 

cm3

 (10 pulgadas cúbicas), requirieron de 56.8 

litros (15 galones) en la etapa inicial, hasta más de 

189.3 litros (50 galones) por semana durante la 

etapa de crecimiento. El Vivero Forestal de 

Investigación de la Universidad de Idaho, en 

Moscow, Idaho, EUA, utiliza de 42.6 a 54.7 litros 

(11.2 a 14.4 galones) de agua de riego por 

semana, para 1 000 plantas de coníferas en 

contenedores tipo (Ray Leach Pine Cell® ), con 65 

cm3

 (4 pulgadas cúbicas) de capacidad. El Vivero 

Forestal del Estado de Colorado, en Ft. Collins, 

utiliza de 75.8 a 94.6 litros (20 a 25 galones) de 

agua de riego por semana para un millar de sus 

contenedores grandes de espuma de poliestireno 

expandido (Styrofoam ®), con 492 cm3

 (30 

pulgadas cúbicas) de capacidad. 

4.2.4.2 Calidad del agua. 

La calidad el agua de riego, es otro factor 

importante en la selección y manejo del vivero 

forestal. La calidad del agua deberá ser una de las 

primeras consideraciones en la evaluación del sitio 

para el establecimiento de un nuevo vivero, debido 

a que no existe una forma económica de mejorar la 

calidad del agua de riego. 

El término calidad del agua, significa distintas 

cosas para diferentes personas, porque la calidad 

depende del uso pretendido. Para propósitos 

domésticos, factores como el color, sabor, turbidez, 

olor, y concentraciones de iones tóxicos, 

determinan la calidad del agua, mientras que para 

propósitos de riego, la calidad está determinada por 

dos factores: 

1. La concentración y la composición de sales 

disueltas (salinidad total e iones tóxicos 

individuales). 

2. La presencia de hongos fitopatógenos, semillas 

de malezas, algas, y posible contaminación con 

plaguicidas. 

Efectos de las sales en la calidad del agua de 

riego. La salinidad está considerada como el 

factor principal en la determinación de la calidad del 

agua en la agricultura (Richards, 1969). Para 

nuestros propósitos, una sal puede ser definida 

como un compuesto químico que libera partículas 

cargadas, denominadas iones, cuando es disuelta 

en agua: por ejemplo, el nitrato de potasio (KNO3) 

libera dos iones, un catión, cargado positivamente 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

88

(K+) y otro cargado negativamente, un anión (NO3

-

). 

Las sales pueden ser benéficas o perjudiciales, 

dependiendo de las características de los iones 

específicos involucrados, así como de la 

concentración total de sales. El KNO3 es una sal 

fertilizante, y ambos, el K+ y el NO3

-

 son iones 

nutrientes, mientras que otras sales, como el 

cloruro de sodio (NaCl), consisten de iones 

perjudiciales (Na+

 y Cl-), que dañan o incluso matan 

el tejido vegetal. Se proporciona una lista de los 

principales iones que afectan la calidad del agua de 

riego en el cuadro 4.2.3. 

Muchos términos y unidades han sido usados para 

describir la salinidad (cuadro 4.2.4). Puesto que 

una solución acuosa de iones disueltos conduce la 

electricidad, la salinidad tradicionalmente es 

expresada como conductividad eléctrica (CE); tanto 

mayor la concentración de sales, mayor el valor de 

CE. La CE es medida en unidades de 

conductancia eléctrica sobre una distancia 

específica (usualmente 1 cm), y a una temperatura 

estándar [25o

C (77oF)]. Las unidades más 

comúnmente empleadas en la estimación de la 

calidad del agua de riego, son los micromhos por 

centímetro (que se abrevian μmho), y las unidades 

del sistema internacional, los microsiemens por 

centímetro, que son equivalentes. Los 

microsiemens por centímetro (abreviados como 

μS/cm), serán utilizados como unidad estándar de 

CE en esta publicación. 

Otro sistema para reportar el contenido total de 

sales del agua de riego son los sólidos disueltos 

totales (SDT), los cuales pueden ser determinados 

mediante la evaporación de una cantidad (en peso) 

conocida de agua, y pesando el depósito de sales 

resultante (California Fertilizer Association, 1985). 

Los SDT en partes por millón, pueden ser 

estimados multiplicando la CE (en microsiemens 

por centímetro) por 0.64 (cuadro 4.2.4). 

Cuadro 4.2.3 Cationes y aniones que afectan la calidad 

del agua de riego. 

Nombre del 

ión 

Símbolo 

químico 

Peso 

equivalente 

Cationes 

 Calcio Ca2+ 20 

 Magnesio Mg2+ 12 

 Sodio Na+ 23 

 Potasio K+ 39 

Aniones 

 Bicarbonato HCO3

- 61 

 Carbonato CO3

2- 30 

 Cloro Cl- 36 

 Sulfato SO4

2- 48 

 Boro1 -- -- 1

 El boro se presenta en varias formas iónicas diferentes 

en el agua de riego, y por tanto, no puede ser 

proporcionado en una fórmula iónica específica, o un 

peso equivalente. 

Fuente: California Fertilizer Association (1985). 

Cuadro 4.2.4 Términos y unidades utilizados para describir los efectos de la salinidad en el agua de riego. 

Unidades Abreviaturas Factores de conversión 

Sales totales 

 Conductividad eléctrica (CE) 

 sistema mhos 

 mho/cm a 25oC mho/cm ___ 

 milimho/cm mmho/cm 1 mmho = 10-3 mho 

 micromho/cm μmho/cm 1μmho/cm = 10-6 mho 

 mhos/cm x 10-5 mhos/cm x 10-5 ___ 

 sistema siemens* 

 milisiemens/cm mS/cm 1 mS = 1 mmho 

 microsiemens/cm μS/cm 1 μS/cm = 1 mcmho = 10-3 ms 

 decisiemens/m dS/m 1 dS/m = 1 mS/cm 

 Sólidos disueltos totales (SDT) 

 partes por millón Ppm SDT (ppm) = (μS/cm) x 0.64 

 miligramos por litro mg/l 1 ppm = 1 mg/l 

Iones específicos 

 miliequivalentes por litro meq/l Para sales totales: 1 meq/l = μS/cm dividido por 100 

 miligramos por litro mg/l 1 ppm = 1 mg/l 

 partes por millón Ppm ppm = meq/l x PE 

 peso equivalente PE PE = peso atómico entre valencia 

 granos por galón gpg gpg x 17.2 = ppm 

*Las unidades siemens son estándares en el sistema internacional, y los microsiemens por centímetro (μS/cm) son las unidades preferidas 

al evaluar la calidad del agua de riego. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

89

Los iones específicos, generalmente son descritos 

en unidades de miliequivalentes por litro (meq/l) o 

en partes por millón (ppm) (cuadro 4.2.4). Las 

primeras son las unidades preferidas para 

propósitos de determinación de calidad de agua, 

mientras que los últimos son más prácticos para 

cálculos de fertilización, así que ambos deberán ser 

solicitados cuando se mandan hacer pruebas de 

calidad de agua de riego. Aunque la conversión 

exacta varía con los iones involucrados, 1 000 

μS/cm de salinidad son aproximadamente iguales a 

640 ppm de sales totales, y el total de sales en 

meq/l puede ser estimado dividiendo la CE, en 

μS/cm, por 100 (cuadro 4.2.4) (California Fertilizer 

Association, 1985). 

La localización topográfica de un vivero, puede 

tener un efecto sobre la calidad del agua de riego, 

debido a influencias climáticas locales o 

geológicas. El agua de riego puede ser 

contaminada con agua salada en áreas costeras. 

En climas áridos o semiáridos, donde la 

evapotranspiración excede la precipitación, las 

sales se acumulan en forma natural en el suelo, y 

los depósitos geológicos y las fuentes subterráneas 

de agua para el riego, con frecuencia tienen un 

elevado contenido de sales. Matthews (1983a), 

reporta que la calidad del agua de riego fue mucho 

mejor en viveros costeros que producen en 

contenedores, en Columbia Británica, que en los 

del interior de la provincia. Hallett (1987), probó 32 

fuentes de agua de riego en las relativamente 

húmedas Provincias Marítimas de Canadá, y 

encontró un promedio de CE de 170 μS/cm, en 

comparación con un valor medio de CE igual a 507 

μS/cm, para 15 viveros, en el interior semiárido del 

oeste de los Estados Unidos (Landis, 1982). No 

obstante, existe una significativa variación local, 

pues los valores variaron de 19 a 787 μS/cm en las 

Provincias Marítimas, y de 58 a 1 460 μS/cm en el 

oeste de los Estados Unidos. 

Efectos de la salinidad en el crecimiento de las 

plantas. Las sales solubles pueden afectar el 

crecimiento de las plantas en varias formas 

distintas. Fuller y Halderman (1975), discuten 

cuatro efectos: 1) la salinidad total puede reducir la 

disponibilidad de agua, 2) los iones sodio 

disminuyen la permeabilidad del suelo, 3) ciertos 

iones específicos son tóxicos, y 4) se altera la 

disponibilidad de otros nutrientes. Otro efecto no 

biológico de las sales disueltas, es el efecto 

“costras de sales” sobre el follaje, que puede 

afectar la posibilidad de venta de las plantas. Los 

iones específicos involucrados y los criterios de 

evaluación para estas cinco categorías de daño en 

las plantas, son referidas en el cuadro 4.2.5. 

Efecto de la salinidad en la disponibilidad del 

agua. La salinidad total de una fuente de agua 

medida con la CE, ejerce un efecto osmótico en la 

solución del medio de crecimiento, que puede 

reducir el agua disponible para el crecimiento de la 

planta. Las sales reducen el potencial osmótico, y 

por tanto el potencial hídrico en la solución del 

medio de crecimiento: un valor de 3 000 μS/cm 

representa una fuerza osmótica de 0.1 MPa. 

Aunque esto aparenta no ser particularmente 

elevado, puede resultar significativo en etapas 

críticas, como durante la germinación de la semilla, 

especialmente si se permite que el sustrato se 

seque, lo cual puede incrementar grandemente la 

concentración osmótica. Whitcomb (1984), reporta 

que el nivel de sales solubles se duplica cuando se 

reduce el contenido de humedad en el sustrato de 

50% a 25%. Las elevadas tasas de fertilización, 

pueden sumarse a los problemas de salinidad. El 

PO se hace un factor cada vez más significativo 

que el PHMC total, conforme el contenido de 

humedad del sustrato se reduce (fig. 4.2.7). 

Muchas plantas de especies leñosas, y las 

coníferas en particular, son extremadamente 

sensibles al daño por salinidad. El daño principal 

de esta elevada salinidad, es una reducción en la 

tasa de crecimiento, la cual usualmente sucede 

mucho antes de que sean evidentes los síntomas 

foliares visuales. Las especies muy sensibles, 

como Picea pungens (blue spruce) y 

Pseudotsuga menziesii (Douglas fir), pueden 

sufrir reducciones en el crecimiento de hasta 50% 

cuando la CE del sustrato es tan baja como 2 500 

μS/cm (cuadro 4.2.6). Los síntomas de daño por 

sales varían con las especies, y pueden incluir uno 

o más de los siguientes: quema de la punta del 

follaje (fig. 4.2.14A), quemaduras o color azuloso; 

“achaparramiento”; crecimiento deficiente, y 

eventualmente la muerte. El agua con elevados 

niveles de sales también puede originar depósitos 

blanquecinos sobre las superficies de las hojas 

(fig. 4.2.14B), que aunque no son dañinos 

directamente, pueden reducir el valor comercial del 

cultivo. Los depósitos de sales también pueden 

acumularse en las boquillas de los aspersores, 

reduciendo su efectividad. 

En el cuadro 4.2.7 se proporciona una guía de 

calificación de la salinidad en el agua de riego, para 

viveros forestales que producen en contenedor. La 

CE puede ser verificada fácilmente en el vivero, 

empleando un medidor de conductividad, y las 

pruebas de salinidad deberán ser llevadas a cabo 

al menos cada mes, porque la calidad del agua de 

riego puede cambiar significativamente en el 

transcurso de un año. La CE y el pH del agua de 

riego en un vivero de California fueron 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

90

supervisados mensualmente, y se halló que los 

valores varían considerablemente a causa de 

diferencias en la calidad del agua proveniente de 

distintos pozos de riego (fig. 4.2.15). Aunque no 

hay una forma económica de remover las sales del 

agua de riego, las prácticas de cultivo como el 

aumento de la porosidad el sustrato, y un lixiviado 

más frecuente, pueden ayudar a reducir los efectos 

del agua salina. 

Cuadro 4.2.5 El exceso de sales solubles afecta el 

crecimiento de plantas en cinco formas 

Efecto Iones 

involucrados 

Criterio de 

evaluación 

Disponibilidad 

de agua 

Todos Conductividad 

eléctrica (CE) 

Permeabilidad 

del suelo 

Sodio 

Calcio 

Magnesio 

Carbonato 

Bicarbonato 

Tasa ajustada de 

adsorción de sodio 

(TAAS) 

Toxicidad 

directa 

Sodio 

Cloro 

Boro 

Concentración del ión 

(ppm) 

Concentración del ión 

(ppm) 

Concentración del ión 

(ppm) 

Disponibilidad 

de nutrientes 

Hierro 

Fósforo 

Calcio 

Magnesio 

Sin pruebas 

específicas 

Sin pruebas 

específicas 

Concentración del ión 

(ppm) 

Concentración del ión 

(ppm) 

Manchado 

foliar 

Hierro 

Bicarbonato 

Calcio 

Magnesio 

Concentración del ión 

(ppm) 

Concentración del ión 

(ppm) 

Dureza total (ppm) 

-- 

Aunque el agua de riego muy salina no es 

deseable, el agua pura también puede causar 

problemas; en efecto, el agua destilada o 

desionizada no es recomendable para el riego de 

especies forestales en cultivo. El agua con un muy 

bajo nivel de sales disueltas, lixiviará iones 

fertilizantes conforme pase a través del sustrato. 

Vetanovetz y Knauss (1988), definen al agua de 

riego "muy pura" como la que tiene un bajo nivel de 

sales solubles totales (CE < 200 μS/cm), y bajos 

contenidos de calcio y magnesio. Tales autores 

establecen que el uso de agua muy pura con 

sustrato artificial, puede lixiviar los nutrientes de 

los correctores de fertilizantes que se aplican, como 

son la caliza y la dolomita, resultando en 

deficiencias de calcio o de magnesio. Sin 

embargo, esto no será un problema serio si en los 

viveros forestales agregan sales fertilizantes al 

agua de riego a través de la inyección de 

fertilizante. 

Cuadro 4.2.6 Salinidad (medida como conductividad eléctrica) del sustrato, que produjo reducciones de 0 a 

50% en la tasa de crecimiento (TRC) 

Clase de tolerancia Especies 

Conductividad del medio (μS/cm)a

a la salinidad Representativas 0% TRC 10% TRC 25% TRC 50% TRC 

Muy sensible Picea pungens 

Pseudotsuga menziesii 

1,000 1,400 1,800 2,500 

Sensible Juniperus virginiana 

Magnolia grandiflora 

1,400 2,000 3,000 4,600 

Moderadamente tolerante Pinus ponderosa 

Fraxinus pennsylvanica 

2,500 3,400 4,800 7,000 

Tolerante Eleagnus angustifolia 

Pinus halepensis 

4,500 5,800 8,000 12,000 

Muy tolerante Atriplex spp. 

Casuarina cunninghamiana 

8,000 10,000 13,000 18,000 

a

 = Conductividad eléctrica de un extracto de saturación (CEe) del sustrato, medida en microSiemens por centímetro 

( = micromhos por centímetro). Fuente: modificado de Ayers (1977), y Handreck y Black (1984). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

91

 4.2.14A 4.2.14B

Figura 4.2.14 Las sales disueltas, independientemente de que provengan de fuentes naturales o de fertilizantes 

agregados, pueden afectar a las plantas en varias formas: necrosis de márgenes foliares, o "quema de puntas" (A), o 

punteado en las hojas (B). 

Cuadro 4.2.7 Estándares de calidad del agua de riego, 

para especies forestales producidas en contenedor. 

Índice de calidad Unidades Clasificación por calidad 

Buena Marginal Pobre 

Salinidad μS/cm 

μmhos/cm 

0-500 500-1,500 >1500 

Efecto del sodio en 

la permeabilidad 

del suelo1

RAAS 0-6 6-9 >9 

Umbral de toxicidad 

Iones tóxicos 

Sodio ppm 50 

meq 2.2 

Cloro ppm 70 

meq 2.0 

Boro2 ppm 0.75 

meq -- 

Iones nutrientes 

Calcio ppm 100 

meq 5.0 

Magnesio ppm 50 

meq 4.2 

Sulfato ppm 250 

meq 5.2 

Iones que producen manchado foliar 

Bicarbonato ppm 60 

meq 1.0 

Dureza total ppm 206 

(Ca + Mg) 

Hierro ppm 0.1 1 La razón ajustada de adsorción de sodio (RAAS), no es 

importante en los viveros que producen en contenedor, a menos 

que se utilice suelo como medio de crecimiento. 

2

 El boro existe en varias formas iónicas, y por ello los 

miliequivalentes no pueden ser determinados con precisión. 

Fuente: modificado de Ayers (1977), Bunt (1976), Swanson 

(1984), Fitzpatrick y Verkade (1987), Vetanovetz y Knauss 

(1988). 

Efecto del sodio en la permeabilidad del medio 

de crecimiento. Aunque el sodio (Na+

) es tóxico 

para las plantas, este ion tiene igualmente un serio 

efecto en la estructura del sustrato. Un exceso de 

iones Na+ en relación a la concentración de iones 

calcio (Ca2+) y magnesio (Mg2+), puede originar que 

las partículas de arcilla se dispersen y sellen los 

poros, reduciéndose seriamente la permeabilidad y 

el intercambio gaseoso. Este efecto del sodio, 

usualmente se mide en términos de la razón de 

adsorción de sodio (RAS), la cual da un índice 

relativo de la concentración de iones Na+

 a Ca2+ y 

Mg2+. En la actualidad, una revisión de los índices 

de RAS, denominada la razón ajustada de 

adsorción de sodio (RAAS), es preferida porque 

también considera el efecto de los iones carbonato 

(CO3

2-) y bicarbonato (HCO3-

) (cuadro 4.2.5). Los 

estándares de la RAAS para el agua de riego en 

viveros, son proporcionados en el cuadro 4.2.7. 

Afortunadamente los problemas de permeabilidad 

inducidos por el sodio sólo afectan suelos naturales 

y por ello, no cuentan en los sustratos "artificiales" 

(aquellos que no contienen suelo), que 

comúnmente son empleados en la mayoría de los 

viveros forestales que producen en contenedor. 

Toxicidad de iones específicos. El tercer efecto 

de la salinidad es la toxicidad directa de ciertos 

iones, especialmente el sodio, el cloro y el boro, 

sobre el crecimiento de la planta (cuadro 4.2.5). 

Las especies vegetales en forma individual, varían 

considerablemente en su sensibilidad a estos 

iones, pero todas las plantas producidas en 

contenedor deberán ser consideradas muy 

susceptibles, a causa de su pequeño tamaño y 

suculencia. Ayers (1977), proporciona guías de 

calidad de agua para cualquiera, la absorción de la 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

92

raíz o foliar, de estos tres iones potencialmente 

tóxicos, y Bunt (1976) también publicó estándares 

de calidad de agua (cuadro 4.2.7). Otros iones, 

incluyendo cualquiera de los iones metales 

pesados, como el manganeso o el zinc, pueden ser 

también tóxicos si están presentes en 

concentraciones suficientemente elevadas. No 

obstante, estos problemas deberán identificarse en 

las pruebas iniciales de calidad del agua de riego. 

Disponibilidad de nutrientes minerales. El 

exceso de ciertos iones, por ejemplo calcio y 

magnesio, en el agua de riego, pueden producir 

desbalances en la solución del medio de 

crecimiento, y acarrear problemas con la absorción 

de nutrientes y su utilización por algunas plantas 

(Fitzpatrick y Verkade, 1987) (cuadro 4.2.5). 

Vetanovetz y Knauss (1988), establecen que si el 

agua de riego contiene más de 100 ppm de Ca2+, 

este nutriente mineral puede acumularse en el 

sustrato y causar deficiencias de Mg2+ o de hierro. 

Más de 50 ppm de Mg2+ en el agua, pueden 

originar deficiencias de otros nutrientes minerales, 

como el Ca2+ y el potasio (cuadro 4.2.7). Estos 

desbalances nutricionales son complicados y 

particularmente difíciles de diagnosticar, pero no 

deberán ser un problema en los viveros forestales 

que producen en contenedor que emplean 

sustratos artificiales, así como un régimen de 

fertilización bien balanceado. 

Residuos foliares. Ciertos compuestos, como el 

hierro y el carbonato de calcio, pueden causar la 

decoloración o manchado en puntos del follaje de 

las plantas (cuadro 4.2.5, fig. 4.2.14B). Aunque 

estos manchados no afectan directamente el 

crecimiento de la planta, pueden afectar el interés 

del cliente. Algunas aguas buenas contienen hierro 

disuelto en forma ferrosa; cuando estas aguas son 

aplicadas mediante riego con aspersores, el hierro 

es convertido a su forma férrica, la cual tiene un 

típico color óxido que puede manchar el follaje 

(Swanson, 1984) u obstruir las boquillas de riego 

(Fitzpatrick y Verkade, 1987). El agua de riego 

"dura" contiene elevados niveles de iones calcio, 

magnesio, carbonato o bicarbonato. Cuando ésta 

es asperjada sobre el follaje de la planta, produce 

depósitos blancos de carbonato de calcio o de 

carbonato de magnesio, después de la 

evaporación. Estos depósitos de carbonato 

también pueden acumularse en las boquillas de 

riego. Los estándares de calidad del agua, en 

relación a iones que manchan el follaje, se 

mencionan en el cuadro 4.2.7. 

Figura 4.2.15 La calidad del agua de riego, medida en términos de conductividad eléctrica y pH, puede variar 

significativamente a lo largo del año, según se demuestra con estos datos de un vivero forestal de California, EUA, que 

produce en contenedor. 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

93

Plagas y enfermedades en el agua de riego. Los 

viveros que producen en contenedor que usan 

agua de riego de fuentes superficiales, como pozas 

(fig. 4.2.16), lagos, o ríos, pueden tener problemas 

con malas hierbas, hongos fitopatógenos, musgos, 

algas o hepáticas (Baker y Matkin, 1978). El agua 

superficial originada de otros viveros o de tierras de 

cultivo, es particularmente susceptible de ser 

contaminada con mohos del agua, como Pythium y 

Phytophthora, que pueden ocasionar la 

“chupadera” (Whitcomb, 1984). El agua de riego 

reciclada de viveros, podría presentar estos 

problemas. Este tipo de hongos pueden aislarse 

de las fuentes de agua de riego del vivero usando 

"cebos" de fruta verde como peras o manzanas 

(McIntosh, 1966). Muchas semillas de malas 

hierbas y esporas de musgos y algas, son lo 

suficientemente pequeñas para pasar a través del 

sistema de riego, y pueden originar problemas 

serios en los viveros que producen en contenedor. 

El agua de riego fue considerada como la fuente de 

problemas con algas azules en un vivero de 

Columbia Británica que produce en contenedor 

(Vance, 1975). 

Las plantas que se desarrollan en el agua, pueden 

ser eliminadas mediante la cloración, y algunos 

sistemas de filtración especializados pueden 

remover muchos organismos que causan 

enfermedades (Ver la siguiente sección para más 

información acerca de la cloración y de la filtración). 

Figura 4.2.16 Las fuentes de agua superficial, como 

esta poza, pueden ser portadoras de semillas de 

malezas, algas y hongos fitopatógenos. 

Contaminación con plaguicidas. El agua de 

riego, especialmente en las áreas agrícolas, puede 

haber sido contaminada con plaguicidas residuales. 

Urbano (1987), reporta que la contaminación del 

agua subterránea por plaguicidas, se está 

volviendo un problema serio en los Estados Unidos. 

En 1979, el ingrediente activo (aldicarb) del 

herbicida Temik® fue identificado en agua de pozo 

en Long Island, Nueva York, EUA; y la 

contaminación del agua subterránea es 

considerada una amenaza potencial en muchas 

otras áreas. Los herbicidas aplicados en áreas de 

cultivo adyacentes, o para el control de malezas 

acuáticas en reservorios, puede afectar la calidad 

del agua de riego. Vance (1975) reporta pérdidas 

sustanciales de planta en contenedor, debido al 

control de malezas acuáticas, mediante herbicidas, 

en un reservorio de agua de riego. Las fuentes 

potenciales de agua de riego deberán ser probadas 

en cuanto a contaminación con plaguicidas cuando 

un sitio está siendo evaluado para establecer un 

vivero. 

Análisis de la calidad del agua. Idealmente, las 

pruebas de calidad del agua son llevadas a cabo 

durante la etapa de selección del sitio para 

establecer el vivero, y a intervalos regulares en lo 

sucesivo, pero muchos viveros forestales nunca 

han realizado un detallado análisis del agua. Un 

análisis completo de la calidad del agua de riego, 

deberá consistir en una evaluación de la salinidad, 

enlistando las concentraciones de ocho iones 

específicos que deberán reportarse en 

miliequivalentes por litro (meq/l), y en partes por 

millón (ppm) (cuadro 4.2.8). Por una pequeña 

cuota adicional, es posible probar los iones 

nutrientes remanentes al mismo tiempo. En adición 

a las concentraciones de iones, el laboratorio de 

análisis de agua deberá también reportar tres 

índices estándares de calidad del agua: 

conductividad eléctrica, razón ajustada de 

adsorción de sodio, y pH. La CE y el pH pueden 

ser medidos directamente, de la muestra de agua, 

y la RAAS puede ser calculada a partir de las 

concentraciones de iones específicos, en 

miliequivalentes por litro (cuadro 4.2.9). 

El agua de riego deberá también probarse en 

cuanto a la presencia de hongos fitopatógenos, 

preferentemente durante el proceso de selección 

del sitio, pero también si se observara algún 

problema en fecha posterior. La mayoría de los 

laboratorios de fitopatología pueden realizar 

bioensayos del agua de riego. La búsqueda de 

herbicidas residuales también es posible, pero 

puede resultar onerosa, a causa de los sofisticados 

procedimientos de análisis requeridos. Debido a 

las diferentes estructuras químicas de los varios 

plaguicidas, se requiere de un análisis individual 

para cada producto sospechado. Por tanto, las 

pruebas especializadas para detectar plaguicidas 

generalmente son consideradas sólo cuando se 

sospecha de un problema definido. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

94

Fitzpatrick y Verkade (1987), discuten el 

procedimiento adecuado para colectar una muestra 

de agua de riego para su análisis: use una botella 

de plástico limpia con una tapa firme, deje correr el 

agua durante varios minutos y enjuague bien la 

botella de muestra, antes de obtenerla. Chu 

(1986), establece que una muestra de 500 ml 

(aproximadamente 1 pinta) es suficiente para la 

mayoría de las pruebas de agua, pero que 1 000 ml 

(aproximadamente 1 cuarto) son requeridos para el 

análisis de plagas. Etiquete la botella de muestra 

adecuadamente, con un marcador a prueba de 

agua, antes de enviarla al laboratorio de análisis. 

La muestra deberá ser analizada tan pronto como 

sea posible, pero puede ser almacenada en 

refrigeración durante periodos cortos, si es necesario. Sin embargo, los parámetros de calidad del 

agua pueden cambiar con el tiempo; Chu (1986) 

reporta que los valores de algunos parámetros de 

prueba, como el pH y el cloro, pueden cambiar 

después de sólo unas pocas horas (cuadro 4.2.10). 

Cuadro 4.2.8 Componentes de una prueba de calidad 

de agua de riego en cuanto a sales solubles. 

Parámetro de prueba del agua Unidades de 

reporte 

Índices de calidad 

 Conductividad eléctrica (CE) μS/cm 

 Razón ajustada de adsorción de sodio 

 (RAAS) 

Ninguna 

 Ph Ninguna 

Concentraciones de iones específicos meq/l y ppm 

 Sodio 

 Calcio 

 Magnesio 

 Cloro 

 Carbonato 

 Bicarbonato 

 Sulfato 

 Boro 

Concentraciones de fertilizante Ppm 

 Nitrógeno amoniacal 

 Nitrógeno nítrico 

 Fósforo 

 Potasio 

 Micronutrientes 

Tratamientos correctivos para el agua de riego. 

Cualquier sistema de tratamiento al agua de riego 

requiere de un gasto inicial significativo, siendo 

prudente determinar la calidad del agua de riego 

antes de que el vivero sea establecido. No 

obstante, a veces no hay opción porque es menos 

caro tratar el agua de riego que intentar cambiar de 

sitio un vivero ya establecido. Existen seis 

procedimientos estándar para tratamiento del agua. 

Acidificación. El agua de riego con frecuencia es 

tratada con ácido para reducir el nivel de pH hasta 

un intervalo ideal de 5.5 a 6.5. Los ácidos fosfórico 

y sulfúrico son los comúnmente usados, aunque 

otros ácidos como el nítrico o el acético, también 

han sido empleados. La acidificación no cambiará 

la salinidad del agua de riego pero si puede 

remover los iones carbonato y bicarbonato, lo que 

se refleja con el menor pH. El ácido fosfórico fue 

utilizado para acidificar el agua de riego en viveros 

forestales que producen en contenedor en el 

Canadá; el pH fue reducido de 8.8 hasta 6.1, pero 

la salinidad total, según se reflejó en las lecturas de 

CE, no fue cambiada apreciablemente (cuadro 

4.2.11) (La acidificación también es discutida en la 

sección 4.1.3.3). 

Ósmosis inversa. Este tratamiento consiste en 

forzar el agua de riego a través de una membrana 

semipermeable, para que los iones de sal sean 

retenidos. Este proceso es relativamente caro, 

pero existen sistemas disponibles para viveros. 

Como ejemplo del costo involucrado, un vivero 

forestal de California, EUA, que produce especies 

forestales en contenedor, recientemente adquirió 

un sistema de ósmosis inversa, con un costo inicial 

de más de US $50 000, diseñado para producir 

40,000 galones por día de agua tratada, a un costo 

de operación de aproximadamente US$0.80 por 

millar de galones. Este sistema está diseñado para 

mejorar significativamente la calidad del agua de 

riego, de un pH inicial de 8.1, y una CE de 2 218 

μS/cm, hasta un pH de 5.8 y una CE de 312 μS/cm. 

Los sistemas de ósmosis inversa, requieren de 

mantenimiento regular, pero representan un 

sistema práctico para tratar el agua de riego, si los 

costos iniciales pueden ser justificados. 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

95

Cuadro 4.2.9 Cálculo de la razón ajustada de adsorción 

de sodio (RAAS). 

[ ] ( ) pHc Ca Mg

Na RAAS + − + = * 1 8.4

( )/ 2

Na = concentración de iones sodio en 

miliequivalentes por litro (meq/l) 

Ca = concentración de iones calcio en meq/l 

Mg = concentración de iones magnesio en meq/l 

pHc, es un índice relativo, calculado de las 

siguientes concentraciones de iones, y es la suma 

de A + B + C: 

Ca + Mg 

+ Na 

(meq/l) A

Ca+Mg 

(meq/l) B

CO3 + 

HCO3 

(meq/l) C

0.5 2.11 0.05 4.60 0.05 4.30

0.7 2.12 0.10 4.30 0.10 4.00

0.9 2.13 0.15 4.12 0.15 3.82

1.2 2.14 0.20 4.00 0.20 3.70

1.6 2.15 0.25 3.90 0.25 3.60

1.9 2.16 0.32 3.80 0.31 3.51

2.4 2.17 0.39 3.70 0.40 3.40

2.8 2.18 0.50 3.60 0.50 3.30

3.3 2.19 0.63 3.50 0.63 3.20

3.9 2.20 0.79 3.40 0.79 3.10

4.5 2.21 1.00 3.30 0.99 3.00

5.1 2.22 1.25 3.20 1.25 2.90

5.8 2.23 1.58 3.10 1.57 2.80

6.6 2.24 1.98 3.00 1.98 2.70

7.4 2.25 2.40 2.90 2.49 2.60

8.3 2.26 3.14 2.80 3.13 2.50

9.2 2.27 3.90 2.70 4.00 2.40

11.0 2.28 4.97 2.60 5.00 2.30

13.0 2.30 6.30 2.50 6.30 2.20

15.0 2.32 7.90 2.40 7.90 2.10

18.0 2.34 10.00 2.30 9.90 2.00

22.0 2.36 12.50 2.20 12.50 1.90

25.0 2.38 15.80 2.10 15.70 1.80

29.0 2.40 19.80 2.00 19.80 1.70

34.0 2.42 

39.0 2.44 

45.0 2.46 

51.0 2.48 

59.0 2.50 

67.0 2.52 

76.0 2.54 

Desionización. La desionización es un método 

efectivo, aunque costoso, para remover sales 

indeseables del agua, y sólo será práctico para 

cultivos de muy elevado valor (Furuta, 1978). El 

proceso consiste en pasar agua sobre resinas con 

iones intercambiables, las cuales son cargadas con 

cualquiera de los iones H+

 o OH-; tales iones son 

intercambiados por el Ca2+, Cl-

, u otros iones 

cargados en el agua de riego, resultando agua 

químicamente pura. Las sales de boro no son 

removidas por la desionización, aunque todos los 

iones pueden ser removidos mediante ósmosis 

inversa (Hartmann y Kester, 1983). Otra 

desventaja de este proceso, además del costo 

elevado, es que resulta relativamente lento, y el 

agua tratada generalmente debe ser acumulada y 

almacenada para proveer el volumen necesario 

para los grandes viveros forestales. 

Suavizadores de agua. Este tratamiento al agua 

está incluido sólo como referencia, y nunca deberá 

ser usado para tratar el agua de riego en los 

viveros forestales que producen en contenedor. 

Los suavizadores de agua no pueden mejorar el 

nivel de salinidad del agua, simplemente convierten 

el agua "dura", la cual contiene abundancia de 

iones Ca2+ y Mg2+, en agua "suave", en la cual 

predominan los iones Na+; este Na adicional, es 

mucho más perjudicial para las plantas que el Ca y 

el Mg que fueron reemplazados (Whitcomb, 1984). 

El beneficio primario del agua suavizada, es que 

hace que los jabones y los detergentes limpien más 

efectivamente. 

Cloración. La cloración, es un tratamiento de agua 

viable para viveros que tienen problemas con 

hongos, bacterias, algas o hepáticas, que son 

introducidas mediante el sistema de riego. Las dos 

formas más comunes para introducir cloro en el 

agua de riego son: 

1 El hipoclorito de sodio líquido (blanqueador 

doméstico, NaOCl) o el hipoclorito de calcio en 

polvo (Ca(OCl)2), pueden agregarse al agua. 

2 Gas de cloro presurizado (Cl2), que puede ser 

inyectado dentro del sistema de riego. 

El gas de cloro es la forma más común y barata de 

clorar el agua, pero es relativamente peligroso de 

utilizar, en comparación con el hipoclorito de calcio 

o de sodio. Cuando el cloro es agregado al agua, 

éste interactúa para producir hipoclorito (HOCl), e 

iones clorito (OCl-

), que son agentes oxidantes en 

polvo, responsables de la acción desinfectante de 

la solución. En realidad, sólo parte del cloro 

aplicado (denominado el cloro residual libre) es 

efectivo, porque algunos de los iones cloro se 

combinan con sustancias orgánicas (cloro 

combinado) y son esencialmente inactivos 

(Tchobanoglous y Schroeder, 1985). Las 

diferentes formas de cloro usado en la cloración, no 

deberán confundirse con el ión cloruro (Cl-

), el cual 

es un importante ión que aporta parte de la calidad 

del agua de riego, pero no tiene propiedades 

desinfectantes (Green, 1987). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

96

Cuadro 4.2.10 Tratamientos previos, tiempo de almacenamiento, y métodos de almacenamiento para muestras de agua de 

riego. 

Parámetro de prueba del 

agua 

Pretratamiento Método de 

almacenamiento 

Tiempo máximo de 

almacenamiento 

pH Ninguno Analizar de inmediato 2 h 

Conductividad eléctrica Ninguno Refrigerar 28 días 

Cloro Ninguno Analizar de inmediato 2 h 

Boro Ninguno Refrigerar 28 días 

Nitrógeno-total, amonio o 

nitrato 

Agregue ácido sulfúrico para reducir bajo 

2.0 el pH 

Refrigerar 28 días 

Fósforo Agregue ácido sulfúrico para reducir bajo 

2.0 el pH 

Refrigerar 3 días 

Sulfato Ninguno Refrigerar 30 días 

Plaguicidas Ninguno Refrigerar 7 días 

Fuente: modificado de Chu (1986). 

Cuadro 4.2.11 Los efecto químicos de la acidificación 

del agua de riego con ácido fosfórico en los índices de 

calidad del agua y en iones individuales. 

Parámetro de Niveles en el agua de riego 

calidad del agua No tratada Acidificada 

pH 8.8 6.1 

CE 377 348 

RAS1 15 15 

CSR1 3.84 0.28 

Ca (ppm) 3.4 3.8 

Mg (ppm) 0.43 0.39 

Na (ppm) 117 118 

CO3 (ppm) 24 0 

HCO3 (ppm) 198 31 

B (ppm) 0.06 0.08 1

 La RAS (razón de adsorción de sodio) no es cambiada 

porque no puede considerar los niveles de CO3 o HCO3, 

mientras que el índice CSR (carbonato de sodio 

residual), y la razón ajustada de adsorción de sodio 

(RAAS), que no ha sido proporcionada aquí, sí lo son. 

Fuente: R. D. Hallett, Servicio Forestal del Canadá, 

Fredericton, NB. 

Hay cinco aspectos en la cloración operativa: 1) 

contacto inicial, 2) tiempo de contacto, 3) forma y 

concentración del desinfectante, 4) especies y 

concentración de los patógenos, y 5) factores 

ambientales, particularmente pH y temperatura 

(Tchobanoglous y Schroeder, 1985). Por ejemplo, 

cuando se expone a temperaturas cálidas y a la luz 

del sol, el hipoclorito se descompone y pierde sus 

propiedades desinfectantes (Green, 1987). Los 

aspectos de ingeniería del sistema de cloración son 

muy complicados para ser discutidos aquí, pero 

debe mencionarse que para ser efectivo como 

desinfectante, debe ser mantenida durante un 

periodo de tiempo específico una concentración 

crítica de cloro residual libre. Baker y Matkin 

(1978), reportan que 1 ppm de cloro residual libre 

matará las zoosporas de Phytophthora 

cinnamomi en un minuto, pero que el micelio del 

hongo es mucho más resistente. 

Un sistema de cloración, sea de inyección de gas 

de cloro o de adición de hipoclorito, deberá 

diseñarse para que las sustancias químicas sean 

cuidadosamente mezcladas con el agua de riego, y 

tengan suficiente tiempo para actuar. Debido a que 

el cloro es desactivado por la materia orgánica en 

suspensión, el agua de riego deberá filtrarse antes 

del tratamiento. El gas cloro es también muy 

peligroso y corrosivo y, por lo tanto, un experto en 

cloración deberá ser consultado cuando se diseñe 

un sistema de inyección de cloro. El nivel de cloro 

en el agua de riego aplicada deberá supervisarse 

periódicamente, para tener la certeza de que el 

sistema de cloración está trabajando 

apropiadamente; esto puede ser hecho con un 

estuche de pruebas para agua de alberca, el cual 

está disponible comercialmente, o con un estuche 

Hach ® (Frink y Bugbee, 1987). 

La cloración está comenzando a usarse 

rutinariamente en algunos viveros forestales y 

ornamentales. El blanqueador doméstico estándar 

(5.25% de hipoclorito de sodio), en una 

concentración de 20.4 cm3

 por 1 000 litros de agua 

(2.6 onzas de líquido por 1 000 galones), producirá 

aproximadamente 1 ppm de cloro (Baker y Matkin, 

1978), y los autores recomiendan un tiempo 

mínimo de contacto de 4 minutos. Bunt (1976), 

recomienda agregar suficiente hipoclorito de sodio 

para producir un contenido de cloro de 5 a 20 ppm, 

pero establece que una concentración de cloro tan 

baja como 0.5 ppm puede ser efectiva si el agua 

tratada es almacenada. Handreck y Black (1984) 

recomiendan agregar suficiente blanqueador para 

dar 2 ppm de cloro. Daughtry (1984), discute un 

sistema operativo de cloración, usando inyección 

de gas cloro, que produce una concentración de 

0.3 ppm de cloro libre residual, y un tiempo de 

contacto de aproximadamente 25 segundos, dentro 

de la línea de riego. 

Muchas plantas son sensibles al cloro, y Bunt 

(1976) no reportó problemas con el agua que 

contenía 5 ppm de cloro. El cloro inyectado a 5 o 

10 ppm se encontró como no fitotóxico para un 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

97

amplio intervalo de especies vegetales, y el nivel 

mayor controló parcialmente a las hepáticas (Scott, 

1980; citado por Whitcomb, 1984). Mucha del agua 

doméstica está clorada, para el control de 

patógenos dañinos al hombre, pero este 

tratamiento usualmente produce un nivel bajo de 

cloro (aproximadamente 1 ppm), que no es dañino 

para la mayoría de las plantas (Frink y Bugbee, 

1987). 

Filtración. Los filtros pueden ser usados para 

remover partículas coloidales en suspensión, como 

es la arena muy fina, que puede dañar el equipo de 

riego o de fertilización, o tapar las boquillas de 

riego. Además de remover las partículas 

inorgánicas suspendidas, los filtros pueden ser 

usados para remover semillas de malezas o algas 

del sistema de riego (figura 4.2.17). 

Comunmente son utilizados dos tipos de filtros para 

el tratamiento de aguas: filtros con medio granular, 

y filtros superficiales. Los filtros con medio 

granular, consisten de camas de partículas 

granulares que atrapan el material suspendido en 

los poros entre las partículas, mientras que los 

filtros superficiales, usan una pantalla porosa o 

malla, para colar el material suspendido del agua 

de riego (Tchobanoglous y Schroeder, 1985). Los 

filtros con medio granular, pueden ser empleados 

para remover arena fina o materia orgánica, y están 

construidos para que puedan ser limpiados con 

agua en retroflujo. Los filtros superficiales incluyen 

pantallas o cartuchos de varios tamaños de malla, 

para remover el material en suspensión; las 

pantallas deben ser removidas físicamente y 

limpiadas, mientras que los filtros con cartucho no 

son reutilizables y deben ser reemplazados 

regularmente (Sprinkler Irrigation Association, 

1983). 

La filtración es recomendable para el agua de riego 

en viveros forestales que producen en contenedor, 

y los filtros deberán ser instalados antes de que el 

agua pase a través del inyector de nutrientes para 

interceptar las partículas de arena que pueden 

originar un desgaste excesivo o taponar las 

válvulas. Jones (1983), recomienda los filtros de 

cartucho porque son fáciles de cambiar. El 

retroflujo de filtros con pantallas o con medio 

granular, no resulta práctico en muchos sistemas 

de riego en viveros. Se recomienda la instalación 

de un filtro con cartucho de 25 μm para el inyector 

de fertilizante Smith Measuremix®. Handreck y 

Black (1984), recomiendan el uso de filtros lo 

suficientemente pequeños para remover partículas 

mayores de 5 μm de diámetro, lo cual retendrá la 

mayoría de las partículas suspendidas (fig. 4.2.17). 

Los tipos de filtros usados para albercas son 

capaces de remover partículas suspendidas 

mayores de 50 μm de diámetro. Los sistemas de 

filtración especializados, como el Millipore®, 

pueden remover partículas de alrededor de 1 μm 

de diámetro; tal sistema es por lo tanto, capaz de 

remover algunos organismos que causan 

enfermedades, así como la mayoría de los sólidos 

suspendidos (fig. 4.2.17). Desafortunadamente, 

estos sistemas sofisticados de filtración, son 

relativamente caros, y requieren de mantenimiento 

frecuente (Jones, 1983). 

Figura 4.2.17 Partículas inorgánicas y algunos agentes bióticos de muchos tamaños pueden ir en el agua de riego para viveros 

forestales que producen en contenedor, por lo cual aquélla deberá ser filtrada para remover tales materiales indeseables 

(modificada de Tchobanoglous y Schroeder, 1985). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

98

4.2.4.3 Temperatura del agua. 

Otro aspecto de la calidad del agua que puede ser 

controlado en los viveros forestales, es la 

temperatura del agua de riego. El riego con agua 

fría puede reducir significativamente la temperatura 

del sustrato, y se ha demostrado que esto produce 

reducciones en el crecimiento de las plantas, en 

viveros que producen especies ornamentales en 

contenedor. Seeley y Steiner (1965), aplicaron 

agua de riego con diferentes temperaturas a un 

sustrato a base de suelo, y hallaron que el agua a 

una temperatura de 4.5o

C (40oF), redujo en 4oC 

(7oF) aproximadamente la temperatura del sustrato 

en la capa superficial, y en 1.7o

C (3oF) a la 

profundidad de 7.6 cm (3 pulgadas). Carpenter y 

Rasmussen (1970), estudiaron el efecto del agua 

fría en el crecimiento de dos cultivos de especies 

florales, y registraron bajas temperaturas en el 

sustrato. Estas bajas temperaturas ocasionaron 

reducción de la altura y peso de la planta, durante 

la estación de invierno. Hanan et al. (1978), 

recomiendan a los viveristas ornamentales en 

climas fríos, considerar el uso de agua de riego 

calentada al intervalo de temperatura ambiente que 

prevalece durante el día. 

No ha sido estudiado a detalle el efecto de usar 

agua fría en de riego en los cultivos de especies 

forestales, pero definitivamente el suelo frío puede 

reducir la absorción de agua de los árboles. 

Kramer y Kozlowski (1979) reportan que la 

resistencia al flujo de agua a través de las raíces de 

los árboles, se duplica conforme la temperatura 

desciende de 25 a 5o

C (77 a 41oF). Kozlowski 

(1943), reportó que las plantas de pino sufrieron 

una reducción del 50% en la tasa de transpiración, 

y comenzaron a marchitarse a temperaturas del 

suelo iguales a 5o

C (41oF), en comparación con 

una temperatura control de 30oC (86oF). Sin 

embargo, las plantas de especies leñosas difieren 

en su respuesta a las temperaturas del sustrato. 

Kozlowski (1943) encontró que el Pinus taeda

(loblolly pine) fue afectado más que el Pinus 

strobus (eastern white pine), y Kaufman (1975) 

observó que la resistencia de las raíces a la 

absorción de agua se hizo más limitada en plantas 

de un cítrico a 13.5o

C (58oF), en comparación con 

los 7.5o

C (45oF) para Picea engelmannii

(Engelmann spruce). 

Sobre una base operativa, el efecto de agua fría en 

el crecimiento de especies forestales no ha sido 

suficientemente estudiado como para hacer 

recomendaciones específicas, pero este efecto 

puede ser significativo para cultivos de invierno, en 

climas del norte. El riego con agua fría puede ser 

más dañino durante la germinación de la semilla y 

durante la emergencia de la plántula. Una de las 

formas más prácticas de mantener el sustrato a 

temperaturas ideales, es el proporcionar 

calentamiento bajo las mesas de cultivo, el cual 

puede ser más económico que el calentamiento 

directo de la totalidad del volumen de agua de riego 

a aplicar. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

99

4.2.5 Tipos de Sistemas de Riego 

El método de aplicación del agua de riego en los 

viveros de contenedores, depende del tamaño del 

vivero y de las características de las especies en 

cultivo. La mayoría de los viveros grandes, usan 

algún tipo de sistema de riego mecanizado; con 

base en la Encuesta de Viveros que Producen en 

Contenedor, sólo el 2% de quienes la respondieron, 

usaban riego manual. El riego manual, sin 

embargo, es necesario frecuentemente para los 

viveros forestales pequeños o para los viveros que 

producen especies con requerimientos de agua 

radicalmente diferentes (fig. 4.2.18). 

Furuta (1978), enlista tres tipos principales de 

sistemas de riego empleados en los viveros 

ornamentales que producen en contenedor: 

asperjado desde del techo, contenedor individual 

(incluyendo riego por goteo), y subirrigación. El 

asperjado desde el techo es el único sistema 

utilizado en los viveros forestales que producen en 

contenedor, porque los contenedores son muy 

pequeños para el riego por goteo de contenedores 

individuales, y la subirrigación limitará la poda de 

raíces por contacto con el aire, al fondo de los 

contenedores. 

Figura 4.2.18 El riego manual es la única forma de regar 

pequeños lotes de plantas sensibles al agua, como es el 

caso de muchas especies de plantas nativas. 

4.2.5.1 Sistemas de riego en la parte superior. 

La consideración básica de diseño en cualquier 

sistema de riego empleado en los viveros 

forestales, es que el agua debe ser aplicada 

uniformemente a muchos contenedores 

individuales, que tienen un diámetro relativamente 

pequeño en relación a su volumen. Para complicar 

las cosas, cada contenedor alberga una plántula en 

crecimiento, que eventualmente producirá 

suficiente follaje para interceptar una proporción 

significativa del agua de riego aplicada, dificultando 

que ésta pueda alcanzar la superficie del sustrato. 

Este tipo de sistemas también son muy gastadores 

de agua, pues sólo un porcentaje limitado del agua 

aplicada alcanza las raíces de las plantas. 

Weatherspoon y Harrell (1980), estudiaron la 

eficiencia de diferentes métodos de riego para 

plantas ornamentales en contenedores, y hallaron 

que sólo del 13 al 26% del agua aplicada a través 

de los aspersores en el techo, fue retenida por el 

sustrato. Como ventaja, el sustrato artificial 

utilizado, tiene suficiente capacidad de infiltración, 

en comparación con la mayoría de los suelos 

agrícolas naturales, además el arrastre por el 

viento no es problema en los invernaderos 

completamente cerrados. 

Existen muchos tipos de este sistema de riego, 

pero en los viveros forestales de contenedores, 

éstos pueden ser divididos en sistemas móviles y 

fijos. Los sistemas móviles consisten de un aguilón 

desplazable, y el 59% de los viveros encuestados, 

usan este tipo de sistema de riego. Los sistemas 

fijos de riego, consisten de boquillas espaciadas 

regularmente, y fueron usados en el 31% de los 

viveros encuestados, mientras que el 10% restante, 

usaban alguna combinación de sistemas de riego. 

Sistemas de riego móviles. Este popular sistema 

de riego consiste de un aguilón orientado 

horizontalmente, el cual lleva una tubería de 

distribución, conteniendo una serie de boquillas 

regularmente espaciadas. La estructura es tirada 

mecánicamente a lo largo del área de cultivo por un 

motor eléctrico, y normalmente cubre una o más 

mesas (fig. 4.2.19). El aguilón se regresa 

mecánicamente cuando alcanza el final de la mesa 

y las plantas se riegan en dirección opuesta. 

Normalmente se requiere determinado número de 

pasos para saturar por completo a los 

contenedores. Los aguilones pueden estar sujetos 

por un carril en el techo, o bien estar en un carro 

sobre el piso; la manguera de conexión es 

empujada a lo largo de la parte baja del carro que 

la soporta o de los carriles sobre el piso. 

Estos sistemas de riego distribuyen agua muy 

uniformemente, en comparación con los sistemas 

fijos, porque proporcionan una cortina móvil de 

agua sin ninguno de los problemas de distribución 

inherentes a los aspersores en círculos. Sin 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

100

embargo, son relativamente caros, y puesto que se 

trata de sistemas mecanizados, son susceptibles 

de descomponerse. Sheareer (1981), puntualiza 

que los aspersores móviles no son eficientes para 

la protección ante heladas, puesto que se mueven 

muy lentamente como para proporcionar una 

cubierta continua en todas las áreas de cultivo. 

 4.2.19A 

 4.2.19B 

Figura 4.2.19 Sistemas móviles de riego con aguilón: 

montado en el piso y cubriendo dos mesas de 

invernadero (A), y una estructura montada en rieles en 

un complejo de cultivo al aire libre (B).

Una variedad de tipos de boquillas han sido 

empleados en estas estructuras de riego, 

incluyendo circulares, cónicas y abanico plano, 

aunque la mayoría de los viveros usan alguna 

variedad de las boquillas de abanico plano (fig. 

4.2.20A). Si es posible, deberá usarse una boquilla 

de aspersión suave, como la empleada para 

plaguicidas, para minimizar la nebulización, 

asegurar una buena penetración a través del follaje 

de la planta, y para aplicar la cantidad requerida de 

agua de riego en poco tiempo. Algunos viveros 

tienen tres tipos diferentes de boquillas de riego 

montadas sobre los aguilones paralelos: una 

boquilla en abanico plano para el riego (fig. 

4.2.20A), una boquilla nebulizadora (fig. 4.2.20B), y 

una boquilla en cono hueco para aplicar 

plaguicidas. 

4.2.20A

4.2.20B 

Figura 4.2.20 Tipos de boquillas usadas en estructuras 

móviles de riego: boquilla en abanico plano, para riego 

de rutina (A), y boquilla nebulizadora, para riego 

superficial ligero y para mantener la humedad (B).

Una vez que ha sido seleccionada la boquilla de 

riego, la cobertura del riego es dependiente de: 1) 

el espaciamiento de las boquillas sobre el aguilón, 

2) la distancia entre la boquilla y los contenedores, 

3) la presión del agua en la boquilla, y 4) la 

velocidad del aguilón. El espaciamiento de las 

boquillas a lo largo del aguilón y la distancia 

adecuada encima de la cama, pueden ser 

determinados a partir de las especificaciones de 

funcionamiento proporcionadas por el fabricante. 

Hallett (1982a), recomienda las boquillas Teejet 

8003® montadas en centros de 31 cm (12.2 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

101

pulgadas), sobre un aguilón puesto a 40 o 50 cm 

(15.7 a 19.7 pulgadas) por encima de las plantas. 

Willingdon (1987), establece que las boquillas 

Teejet 8008 ® son las más comúnmente usadas en 

estructuras de riego de este tipo, en los viveros de 

Columbia Británica. La presión en las boquillas 

puede ser medida directamente de la boquilla de 

riego, con un calibrador de presión, equipado con 

un tubo "pitot". Tenga presente que la lectura de la 

presión de agua en el inyector de nutrientes o en la 

línea superior, puede ser significativamente 

diferente de la presión real liberada en la boquilla; 

para supervisar la eficiencia de la boquilla de riego, 

por lo tanto, la presión del agua debe ser medida 

en o cerca de las boquillas. El factor final que 

controla la cobertura del riego, es la velocidad 

propia del aguilón. Una velocidad de 

aproximadamente 2.4 a 3.1 m/min (8 a 10 pies por 

minuto), ha probado ser efectiva en un vivero 

forestal que produce en contenedor en Idaho, EUA 

(Myers, 1987). 

Muchas estructuras de riego comerciales están 

equipadas con motores de velocidad variable, para 

que la velocidad pueda ser ajustada a cada 

situación requerida en el vivero. 

Aspersores fijos en la parte superior. Este tipo 

de sistema de riego, consiste de una serie de 

líneas de riego paralelas, usualmente construidas 

con tubería plástica de PVC, con los aspersores 

espaciados a intervalos uniformes para formar un 

modelo en cuadrícula. Los aspersores en la parte 

superior aplican agua a una velocidad mayor, en 

comparación con el sistema de riego de aguilón, y 

es relativamente más barato de instalar y de operar 

(Davidson y Mecklenburg, 1981). Los sistemas de 

riego fijos generalmente no aplican agua tan 

uniformemente como los sistemas móviles, pero 

harán un trabajo aceptable siempre y cuando estén 

apropiadamente diseñados, y se les proporcione un 

buen mantenimiento. 

Generalmente la estructura de cultivo es dividida en 

"bahías" de riego, dependiendo del número de 

boquillas que la bomba pueda operar a la vez, y de 

la presión de agua deseada. Las presiones ideales 

para operación varían con el tipo de aspersor, y las 

especificaciones están disponibles por parte de los 

fabricantes. Algunos aspersores vienen con 

diferentes coberturas, como el círculo total, el 

medio círculo, y el cuarto de círculo, así que puede 

ser obtenida la total cobertura con traslapes 

mediante la colocación de líneas de riego alrededor 

del perímetro de la bahía de riego. Cada bahía 

deberá ser controlada en forma individual con una 

válvula selenoide, la cual puede ser conectada a un 

reloj medidor del riego, para que la duración y 

secuencia del mismo pueda ser programado. El 

tamaño de cada bahía de riego puede ser diseñado 

para que las especies con diferentes 

requerimientos de agua puedan ser cultivadas 

dentro de una estructura grande. Cuando se 

diseña un nuevo sistema de riego, es una buena 

idea obtener ayuda de un especialista en irrigación, 

para asegurarse de que el sistema está 

balanceado, en términos de cobertura y de presión 

del agua. 

Varios tipos de boquillas de riego son usadas en 

los sistemas de riego fijos en la parte superior. Los 

aspersores en hileras giratorias, que tienen 

boquillas de compensación al término de la 

estructura de rotación, forman hileras de agua en 

círculo cuando se aplica la presión del agua (fig. 

4.2.21A). Las boquillas estacionarias (fig. 4.2.21B), 

no tienen partes móviles pero distribuyen agua en 

un patrón circular; estas boquillas también vienen 

en modelos de medio círculo y de cuarto de círculo. 

Las boquillas nebulizadoras a veces también son 

instaladas en líneas de riego en la parte superior. 

Las boquillas nebulizadoras son primeramente 

utilizadas durante el periodo de germinación, y para 

control de enfriamiento y de humedecimiento, 

porque éstas no proporcionan agua lo 

suficientemente rápido, como el riego normal. 

Algunas de las desventajas de los sistemas de 

riego fijos en la parte superior son: 

1 Carencia de uniformidad en la cobertura: este 

problema puede ser evitado mediante un 

apropiado diseño del sistema de riego, 

asegurando un adecuado traslape entre las 

boquillas (ver la sección 4.2.5.2 para 

consideraciones relacionadas con el diseño 

del riego). 

2 Desperdicio del agua de riego: puesto que el 

agua es aplicada a toda el área de cultivo, 

incluyendo pasillos y paredes, se desperdicia 

bastante más que con los sistemas de 

aguilones. No obstante, en climas áridos esto 

no representa gran problema, pues este 

exceso agrega humedad dentro de la 

estructura de cultivo. 

3 Goteo de la boquilla: Una cantidad de agua 

residual se mantiene en las líneas después de 

que la válvula selenoide ha cerrado, y ésta 

gotea por las boquillas sobre las mesas de 

producción, sacando la semilla fuera de los 

contenedores o favoreciendo problemas de 

enfermedades al mantenerse saturado el 

sustrato y el follaje constantemente húmedo. 

Las líneas de riego deben ser localizadas

sobre los pasillos para que las boquillas 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

102

drenen sobre el piso. Existen válvulas 

especiales antigoteo (fig. 4.2.21A), las cuales 

cierran cuando la presión del agua se reduce, 

y también pueden ser fijadas unas líneas de 

goteo en el fondo de la boquilla, para drenar el 

exceso de agua. El agua residual que se 

mantiene en las líneas de riego, también 

puede ser un problema durante el invierno, 

cuando su congelamiento puede romper las 

tuberías. 

4.2.21A 

4.2.21B 

Figura 4.2.21 Tipos de boquillas de riego empleadas en 

sistemas fijos en la parte superior: boquilla tipo giratoria 

(spinner–type), equipada con válvula antigoteo (A), y 

boquilla de riego estacionario (B). 

Furuta (1978), Langhans (1980), y Davidson y 

Mecklenburg (1981), presentan una buena 

discusión en relación al diseño y operación de los 

sistemas de riego enclavados en la parte superior. 

Aspersores basales fijos. Estos sistemas son 

comúnmente usados en áreas de cultivo a la 

intemperie, o en áreas de carga; éstos son 

similares a los sistemas en la parte superior, por 

cuanto toca a diseño y operación, pues usan una 

cuadrícula regular de líneas de riego permanentes 

o móviles, con aspersores espaciados 

regularmente (fig. 4.2.22A). El tipo principal de 

boquilla aspersora es la de impacto rotatorio (fig. 

4.2.22B); esta boquilla gira lentamente debido al 

impacto de un brazo saltador recargado que se 

mueve hacia dentro y fuera del chorro de la 

boquilla. Los aspersores de impacto rotatorio están 

disponibles con muchos proveedores en una gran 

variedad de tamaños de boquilla y coberturas. 

Debido a que el brazo de impacto es conducido por 

la presión del agua fuera del chorro de la boquilla, 

el patrón de distribución del agua de estos 

aspersores, es particularmente dependiente de la 

apropiada presión del agua. Los aspersores 

estacionarios pueden también usarse en sistemas 

basales de riego. 

Una gran ventaja de los sistemas de riego basales, 

es que los aspersores de impacto tienen áreas de 

cobertura relativamente grandes, lo cual significa 

que se requerirá de menos boquillas y de menos 

tubería de riego. Los aspersores de impacto, 

típicamente tienen mayor tamaño de gota, en 

comparación con los sistemas de aguilón o los 

enclavados en estructuras aéreas, y pueden 

ocasionar daños por salpicadura sobre la semilla 

en germinación. El agua residual drena por un 

desagüe, aunque aún así ésta puede seguir siendo 

un problema (fig. 4.2.22B). Sin embargo, todas las 

líneas de riego deben correr a lo largo de o bajo el 

piso, creando obstáculos para los trabajadores, y 

haciendo difícil de operar la maquinaria. Los 

sistemas de riego basales comúnmente no son tan 

efectivos como los sistemas móviles en la 

aplicación uniforme del agua; no obstante, un 

adecuado diseño y un buen mantenimiento, pueden 

dar como resultado un sistema aceptable. 

4.2.5.2 Principios en el diseño de sistemas de 

riego fijos. 

La eficiencia de un sistema de riego, en primer 

término depende de su diseño original, y habrá 

pocos procedimientos operativos que puedan 

mejorar un sistema pobremente diseñado. Las 

consideraciones ingenieriles básicas, como la 

pérdida por fricción en las tuberías o uniones, y su 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

103

efecto en la presión del agua para la función de los 

aspersores, deben ser incorporados como parte del 

diseño del sistema de riego. Por tanto, es 

importante consultar a un ingeniero en irrigación 

durante las etapas de planeación. Una excelente 

referencia general para el diseño de sistemas de 

riego con aspersores, está disponible en la 

Asociación de Irrigación (Irrigation Association) 

(Pair et al., 1983). 

4.2.22A 

4.2.22B 

Figura 4.2.22 Los sistemas de riego basales, consisten 

de líneas de riego fijas o móviles (A), ajustadas con 

boquillas enclavadas a espacios regulares, como las de 

tipo de impacto rotatorio (B). 

La aplicación uniforme del agua esta en función de 

cinco factores: 

1. Diseño de la boquilla 

2. Tamaño del orificio de la boquilla 

3. Presión del agua en la boquilla 

4. Espaciamiento y patrón de distribución de las 

boquillas 

5. Viento 

El tamaño de la boquilla aspersora y su patrón de 

cobertura resultante, puede ser determinado 

mediante la consulta de especificaciones de 

funcionamiento que proporcionan los fabricantes. 

Los viveristas que producen en contenedor, 

deberán seleccionar un tamaño de boquilla que sea 

lo suficientemente grueso para penetrar el follaje de 

las plantas, y para minimizar el arrastre por el 

viento, pero no tan grande como para crear 

problemas de salpicado. 

La presión del agua en la boquilla tiene un mayor 

efecto en la función del aspersor y en su eficiencia, 

y debe ser considerada durante la planeación 

inicial. Las especificaciones de funcionamiento 

para cada tipo de aspersor, pueden obtenerse con 

los fabricantes. La presión del agua deberá ser 

supervisada regularmente con un calibrador 

montado permanentemente cerca de la boquilla 

(fig. 4.2.23), o con un calibrador de presión 

equipado con un tubo "pitot", directamente del 

orificio de la boquilla aspersora. La presión deberá 

verificarse en varias boquillas, incluyendo la más 

alejada de la bomba. La importancia de las 

verificaciones regulares en la presión del agua, no 

debe ser subestimada, porque muchos factores 

pueden originar cambios en la presión de la 

boquilla. La presión del agua que sea muy alta o 

muy baja, puede causar patrones de distribución 

erráticos, como los mostrados en la figura 4.2.24 

(Compare el patrón de la figura 4.2.24A, con el 

diagrama de distribución de agua obtenido en 

computadora, que se muestra en la figura 4.2.28A). 

Figura 4.2.23 La presión del agua deberá verificarse 

regularmente en o cerca de la boquilla de riego. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

104

Tanto el tipo de boquilla como la presión del agua, 

afectan el tamaño de la gota de riego, y el tamaño 

promedio de ésta disminuye conforme se reduce el 

tamaño de la boquilla, y conforme aumenta la 

presión del agua. Las gotas que son muy grandes 

pueden causar daño físico por salpicado entre las 

semillas en germinación, mientras que las gotas 

muy pequeñas de boquillas "nebulizadoras", están 

sujetas a arrastre por el viento, y a pérdidas por 

evaporación en las áreas de cultivo a la intemperie. 

Handreck y Black (1984), estiman que hasta el 90% 

del agua de una boquilla nebulizadora puede ser 

perdida durante un día cálido y con vientos. Las 

boquillas de riego por nebulización pueden ser 

corregidas reduciendo la presión del agua o 

cambiando el tamaño del orificio de la boquilla. Un 

procedimiento simple para medir el tamaño de la 

gota, consiste en poner un plato con aceite SAE 90 

bajo el chorro de riego, y medir el tamaño de las 

gotas. Una gota de riego con un diámetro en el 

intervalo de 1.0 a 1.5 mm (0.04 a 0.06 pulgadas), 

es recomendable para la mayoría de las 

situaciones en viveros que producen en contenedor 

(Handreck y Black, 1984). 

El espaciamiento y el patrón de distribución de los 

aspersores en los sistemas de riego fijos, está 

relacionado con la función de los aspersores, y con 

el efecto del viento. Independientemente del tipo 

de aspersor usado, la distribución del agua nunca 

es del todo uniforme sobre el área de cobertura, así 

que los sistemas de riego deberán diseñarse para 

proporcionar un traslape adecuado entre los 

aspersores. Esto es especialmente importante en 

las "casas de sombra" o en las áreas de cultivo al 

la intemperie, donde el arrastre del viento puede 

representar un problema (figs. 4.2.19B y 4.2.25). 

Furuta (1978), establece que el máximo 

espaciamiento entre aspersores de impacto 

rotatorio, deberá ser desde el 65% del diámetro del 

asperjado, sin viento, hasta 30% con vientos 

superiores a 13 kilómetros por hora (8 millas por 

hora). Los aspersores fijos no deberán espaciarse 

más allá del 50 a 65% del diámetro de cobertura 

del aspersor. El espaciamiento de un aspersor 

giratorio no deberá ser superior al 40% del 

diámetro del asperjado en la hilera, ni mayor al 

60% del diámetro entre hileras (fig. 4.2.26), y 

deberá producir una eficiente cobertura en las 

condiciones de viento que normalmente se tienen 

en los viveros forestales. Con mucha frecuencia, 

los aspersores están espaciados a intervalos 

mayores que los referidos, en un esfuerzo de 

costo/eficiencia, pero esto es una falsa economía, 

considerando el alto efecto del agua y de los 

nutrientes inyectados en el crecimiento de las 

plantas. 

4.2.24A 

4.2.24B 

Figura 4.2.24 La baja presión del agua, o las boquillas 

inadecuadamente ajustadas, pueden originar patrones de 

distribución de agua irregulares, como el denominado en 

"buñuelos", de los sistemas fijos (A), o en hileras, 

característico de sistemas de riego móviles (B). 

Los dos patrones de distribución comunes de 

aspersores para los sistemas de riego fijo, son la 

caja (rectangular), y el diamante (triangular). 

Shearer (1981), concluye que no hay diferencia real 

entre el patrón de rociado rectangular estándar y el 

patrón triangular, bajo condiciones normales. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

105

Figura 4.2.25 Cualquier sistema de riego deberá diseñarse para proporcionar traslape entre las cabezas individuales de 

rociado, particularmente en las áreas de cultivo a la intemperie, donde la interferencia del viento es probable. 

4.2.5.3 Probando la eficiencia de los sistemas 

de riego. 

Tanto los sistemas nuevos como los ya 

establecidos, deberían ser probados 

periódicamente, para ver si están funcionando 

apropiadamente. Muchos viveristas asumen que 

los sistemas nuevos funcionarán acorde con las 

especificaciones de ingeniería, pero esto deberá 

verificarse bajo condiciones normales de operación. 

Fischer (1987), encontró que los patrones de riego 

teóricos, diferían de los patrones reales, y atribuye 

esta discrepancia a dos factores: 

1. Los patrones de distribución teóricos asumen 

que la presión del agua será idéntica en cada 

boquilla, lo cual es imposible porque la presión 

se reduce dentro de las líneas de distribución 

laterales. 

2. La colisión de las gotas entre aspersores 

adyacentes, afectará su distribución. 

Los sistemas de riego necesitan verificarse cada 

cierto tiempo porque las boquillas pueden 

taponarse o deteriorarse, hasta el punto en que no 

puedan operar más adecuadamente. 

Los sistemas de riego pueden verificarse fácilmente 

corriendo una "prueba de copa", la cual consiste en 

medir el agua de riego captada en una serie de 

copas (recipientes), colocadas sobre un sistema 

regular en cuadrícula a través del área de cultivo 

(fig. 4.2.27). Los recipientes para la prueba de 

copas deberán tener una abertura circular que 

cuente con un borde angosto; la forma del 

recipiente bajo la abertura no es importante, 

siempre que éste sea estable y con suficiente altura 

para almacenar varios centímetros de agua sin 

pérdidas por salpicado. La cantidad de agua 

colectada en cada recipiente, puede ser convertida 

a tasa de precipitación en pulgadas por hora, con el 

uso de la siguiente fórmula (Furuta, 1978): 

P = (C x 7620) / (D2

 x T) 

Donde: 

P = agua de riego aplicada por hora (cm) 

C = agua recogida en el recipiente (ml) 

D = diámetro interior de la abertura del recipiente 

(mm) 

T = tiempo del periodo de riego (min). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

106

Especificaciones para la boquilla Roberts® # 4 

Presión de la boquilla (Mpa) 

(psi) 

0.11 

16 

0.14 

20 

0.16 

24 

0.19 

28 

0.22 

32 

0.25 

36 

0.28 

40 

0.30 

44 

Diámetro de asperjado (m) 

(pies) 

7.9 

26 

8.2 

27 

8.5 

28 

9.2 

30 

9.4 

31 

9.8 

32 

10.1 

33 

10.4 

34 

Descarga de agua (lpm) 

(gpm) 

2.72 

0.72 

3.18 

0.84 

3.60 

0.95 

3.97 

1.05 

4.28 

1.13 

4.54 

1.20 

4.81 

1.27 

5.07 

1.34 

 Espaciamiento recomendado: 

 En hileras 40% del diámetro del asperjado 

 Entre hileras 60% del diámetro del asperjado 

 Ejemplo: 

 Presión de la boquilla (medida) = 0.19 MPa 

 Diámetro del asperjado (gráfico) = 9.2 m 

 9.2 m x 0.40 = 3.7 m en hileras (124% de traslape) 

 9.2 m x 0.60 = 5.5 m entre hileras (84% de traslape) 

Figura 4.2.26 Muestra de los cálculos para determinar el adecuado traslape entre aspersores, con sistemas de riego fijos, 

usando las especificaciones para un tipo de boquilla de riego. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

107

El método clásico para determinar la variabilidad en 

la aplicación del agua de riego, fue desarrollado por 

Christensen (1942), mediante el cálculo de un 

índice numérico que él llamó coeficiente de 

uniformidad (CU). El CU es calculado mediante la 

ejecución de la prueba de copas, y empleando los 

datos en la siguiente fórmula (Furuta, 1978): 

CU = 100 [ 1.0 - (B/A) ] 

Donde: 

CU = coeficiente de uniformidad (%) 

B = suma de las desviaciones de los valores 

individuales, con respecto al valor promedio 

A = suma de los valores individuales. 

Un patrón de distribución completamente uniforme, 

producirá un CU de 100%, y tanto menor sea el 

CU, más variable el riego. El objetivo estándar 

para la mayoría de los sistemas agrícolas de riego, 

es un CU de 85% (Zimmerman, 1966), el cual 

también representa el valor mínimo aceptable que 

Shearer (1981) sugiere para cultivos de especies 

forestales en vivero. 

Figura 4.2.27 La eficiencia real de un sistema de riego, 

deberá verificarse periódicamente, con la "prueba de 

copas", la cual consiste en medir el agua captada en una 

serie de copas graduadas, arregladas en un patrón de 

distribución regular, sobre las mesas de producción. 

En la Universidad de California, en Davis, 

recientemente ha sido desarrollado un programa de 

cómputo para modelar el riego con aspersores, 

utilizando como información la altura del agua 

obtenida en la prueba de copas para generar 

gráficas tridimensionales (Fischer, 1987). Usando 

esta información, los problemas de distribución del 

agua pueden ser fácilmente identificados, como en 

el caso de los "buñuelos" derivados de baja presión 

del agua en una boquilla (fig. 4.2.28A), o el patrón 

en "barra de pan" (fig. 4.2.28B), el cual es 

característico cuando se hace una pobre 

distribución del agua alrededor del perímetro del 

área de cultivo. 

4.2.5.4 Sistemas de riego automáticos. 

Varios tipos de controladores automáticos están 

disponibles, algunos usan relojes y uno utiliza el 

peso de los contenedores, de modo que el riego 

puede ser aplicado automáticamente (Hanan et al., 

1978). Este equipo permite al viverista programar 

previamente periodos de riego, y representa un 

gran ahorro de trabajo. El viverista prudente, sin 

embargo, nunca se confiará del todo a los sistemas 

automáticos, y continuará supervisando directa y 

regularmente la eficiencia en el riego, y su efecto 

en el crecimiento de las plantas. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

108

Figura 4.2.28 Los patrones de distribución de los aspersores, pueden ser modelados con el uso de computadoras, 

empleando los datos de la denominada prueba de copas. Estas gráficas tridimensionales ilustran dos problemas comunes, 

encontrados en los sistemas de aspersión fijados en la parte superior: un patrón en "buñuelos", resultante de una baja 

presión del agua en una boquilla (A), y un patrón de "barra de pan", el cual es característico cuando hay un pobre traslape 

entre rociadores, y efectos del viento alrededor del perímetro del área de cultivo (B) (Fisher, 1987). 

A

B
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Volumen 4: Fertilización y Riego

109

4.2.6 Supervisando el Agua en los Contenedores- Determinando Cuándo Regar. 

El determinar el estado de la humedad del sustrato, 

en la mayoría de los contenedores usados en los 

viveros forestales, es un problema porque es difícil 

observar o muestrear el sustrato en los 

contenedores pequeños. Algunos contenedores, 

como el tipo "libro", pueden ser abiertos y permiten 

hacer observaciones directas del contenido de 

humedad del medio, definitivamente una ventaja. A 

reserva de las dificultades operativas, es 

absolutamente necesario supervisar regularmente 

el nivel de humedad del medio de crecimiento en el 

contenedor, a causa del volumen limitado de las 

reservas de humedad en los pequeños 

contenedores, lo que significa que pueden 

desarrollarse rápidamente tensiones hídricas 

críticas. 

Hanan et al. (1978) y Furuta (1978) discuten varias 

técnicas para la revisión de la humedad, las cuales 

pueden ser usadas en los viveros ornamentales 

que producen en contenedor. White (1964), evaluó 

dos métodos estándares, con tensiómetros e 

instrumentos electrométricos (bloques de yeso), 

para cultivos en contenedor, y concluyó que éstos 

no fueron apropiados por tres razones: 1) falta de 

respuesta por arriba de la capacidad de campo, 2) 

deterioro debido a la fertilización frecuente, y 3) su 

relativo gran tamaño, que limita su uso en 

contenedores pequeños. Hanan et al. (1978) 

concluyeron que no hay instrumento económico, ni 

preciso, que pueda medir el contenido de humedad 

del sustrato en contenedores; cualquier método 

debe estar basado en observaciones reales y en la 

experiencia de los viveristas. 

Dos investigaciones sobre supervisión del riego 

han sido dirigidas en los años recientes. McDonald 

(1978), investigó sobre plantas producidas en 

contenedor en viveros forestales en el oeste de los 

Estados Unidos, y encontró que el 60% usó una 

revisión táctil y visual del medio de crecimiento y de 

la condición de la planta, 22% supervisó el peso del 

contenedor, y el 18% restante usó otros métodos, 

incluyendo la cámara de presión. La Encuesta de 

Viveros encontró que la mayoría de los viveros 

forestales que producen en contenedor en los 

Estados Unidos y Canadá, usaron algún tipo de 

sistema de supervisión del riego, incluyendo: peso 

del contenedor (48%), métodos táctiles y visuales 

(33%), medidores de humedad comerciales (8%), y 

una combinación de métodos, incluyendo la 

cámara de presión (11%); 13% de los viveros 

reportaron no usan sistema de seguimiento del 

riego. 

4.2.6.1 Revisión visual y táctil. 

Esta técnica consiste en las observaciones directas 

del sustrato y en la condición de la planta, para 

determinar las necesidades de riego. McDonald y 

Running (1979), describen un sistema para estimar 

el contenido de humedad en suelos de viveros que 

producen a raíz desnuda, usando la "palpación” o 

la “apariencia" del suelo, pero estas guías no son 

aplicables para los medios de crecimiento 

artificiales. La mejor técnica es observar la relativa 

facilidad con que el agua puede ser exprimida del 

medio, e intentar correlacionar esta condición de 

humedad con la apariencia y crecimiento de la 

planta; este proceso requiere mucha experiencia, y 

es muy subjetivo. A reserva de sus obvias 

limitaciones, la técnica visual y táctil aún es 

ampliamente utilizada, y puede resultar muy 

efectiva cuando es usada por un viverista con 

experiencia y conocimientos. 

4.2.6.2 Mediciones del peso del contenedor. 

Con base en los resultados de la Encuesta en 

Viveros, actualmente la medición del peso del 

contenedor es la técnica más popular. El principio 

básico detrás de esta técnica es simple: dado que 

el agua es relativamente pesada en relación a otros 

componentes de los contenedores, el contenido de 

humedad de una charola o bloque de contenedores 

puede ser determinado mediante el peso. El peso 

del contenedor disminuye entre riegos conforme el 

agua de riego se pierde a través de la evaporación 

y la transpiración, y el cultivo de plantas es regado 

cuando el peso del contenedor alcanza un nivel 

determinado (fig. 4.2.29). 

El peso de una charola varía por muchos factores, 

como el tipo del contenedor, el tipo de sustrato, el 

grado de compactación del sustrato, la especie 

cultivada, y la etapa de desarrollo de la planta, pero 

uno de los factores más significativos es el 

contenido de humedad. Matthews (1983b) reporta 

que un contendor "Styroblock 2A ® ", saturado, 

conteniendo sustrato compactado a una densidad 

promedio de 0.1 g/ml (peso anhidro), pesará entre 

7.00 y 8.25 kg. Desarrollando una serie de 

pesadas a contenedores, correspondientes al 

contenido de humedad disponible y a la condición 

de la planta, un viverista puede usar ésta 

información para determinar cuándo regar, y aún 

para manipular el crecimiento y desarrollo de la 

planta. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

110

La única pieza de equipo necesaria para 

determinar los pesos de los contenedores, es una 

báscula de precisión (fig. 4.2.30); algunos viveros 

usan más de una báscula, dejando los 

contenedores sobre éstas en el área de cultivo, 

para que puedan hacerse lecturas rápidamente. 

Los contenedores deberán pesarse 

inmediatamente después del riego, para que los 

resultados puedan ser comparados con precisión. 

El procedimiento de pesado del contenedor debe 

ser también ajustado en relación al peso de la 

planta. Conforme la planta se hace más grande, 

ésta tendrá cada vez una mayor influencia en el 

peso del contenedor (tanto como 10 a 15% del 

peso total del contenedor). Los pesos recientes en 

húmedo de los contenedores, tomando en 

consideración los pesos de las plantas, deberán ser 

calculados a intervalos regulares durante la 

estación de cultivo. 

Los pesos de contenedores regados variarán 

significativamente entre especies, debido a la 

respuesta fisiológica de cada una a la tensión 

hídrica. Matthews (1983b) desarrolló una detallada 

escala de pesos de contenedores para viveros 

forestales que producen en contenedores en 

Columbia Británica, para tres diferentes "grupos de 

plantas" (cuadro 4.2.12). Él ha distinguido tres 

tipos diferentes de contenedores y tres "niveles" de 

tensión hídrica: baja tensión para la fase de 

crecimiento rápido, tensión moderada para la de 

reducción del crecimiento, y tensión mediante 

sequía para inducir dormición durante la fase de 

endurecimiento. El tensionamiento mediante 

sequía es efectivo en algunas especies, como 

Pseudotsuga menziesii (Douglas fir), Picea 

sitchensis (Sitka spruce), Larix occidentalis

(western larch) y Thuja plicata (western redcedar) 

(grupo 3), las cuales son muy sensibles al riego 

excesivo, y producirán un excesivo crecimiento en 

altura, a expensas del crecimiento en diámetro y 

del crecimiento de la raíz. Otras especies, como 

Tsuga heterophylla (western hemlock), Tsuga 

mertensiana (mountain hemlock), Abies spp.(fir), 

Picea glauca (white spruce) y P. engelmannii 

(Engelmann spruce) (grupo 1), pueden ser dañadas 

permanentemente por la tensión con sequía 

indiscriminada (cuadro 4.2.12). Krizek (1985) 

concluyó que el procedimiento de contención del 

agua para inducir tensión hídrica en la planta es 

muy difícil de controlar operativamente, a causa de 

la dificultad para alcanzar y mantener el nivel 

especificado de humedad disponible en el sustrato. 

Figura 4.2.29 El peso del contenedor disminuye 

después del riego hasta que alcanza algún valor mínimo 

predeterminado, punto en el cual deberá aplicarse riego 

(cortesía de Tony Willingdon, Surrey Nursery, BC). 

Figura 4.2.30 A causa del relativamente gran peso del 

agua, el riego puede ser supervisado a través de 

pesadas repetidas en contenedores seleccionados, para 

determinar la pérdida de agua en peso. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

111

Existen dos formas para desarrollar una escala que 

relacione pesos de contenedores con demanda de 

riego: 1) a través de la experiencia y 2) usando 

mediciones del potencial mátrico del sustrato. 

Antes de desarrollar una escala de peso para el 

contenedor, deben ser definidos ciertos términos: 

Peso húmedo = el peso de un contenedor llenado y 

sembrado, después de que ha sido saturado, 

y después de que se le ha permitido drenar 

libremente. El medio estará a "capacidad de 

contenedor", que conceptualmente es lo 

mismo que la capacidad de campo del suelo 

natural. 

Peso de riego = el peso del contenedor cuando la 

irrigación es requerida. Este valor variará 

con el tamaño de la planta y con los objetivos 

de cultivo. 

Desarrollo de una escala de pesos para los 

contenedores a través de la experiencia. El 

primer paso consiste en medir los pesos de los 

contenedores en varios momentos después del 

riego, y en intentar correlacionar estos pesos con el 

contenido de humedad disponible del sustrato, y 

con la condición de la planta. El método visual y 

táctil de observar directamente la cantidad de 

humedad en el medio de crecimiento, puede ser 

usado para estimar los niveles de humedad 

disponible, y el punto de marchitez puede ser 

establecido mediante la observación de la turgencia 

de las plantas durante los periodos de medición. 

Cuando se ha recabado suficiente información de 

pesos de contenedores, los datos pueden ser 

convertidos a una escala de peso de contenedores, 

la cual muestra el peso del riego como un 

porcentaje del peso húmedo. McDonald y Running 

(1979), sugieren que el peso del riego está 

alrededor del 75 u 80% del peso en húmedo. Con 

suficiente experiencia, una escala puede ser 

desarrollada para que el momento de riego pueda 

ser programado en varias etapas de cultivo, 

durante la etapa de crecimiento, e incluso durante 

el empaque y el almacenamiento (cuadro 4.2.13). 

Cada vivero deberá desarrollar sus propias escalas 

de peso de los contenedores, pues puede existir 

variación entre tipos de sustratos, características 

de los contenedores, además de la respuesta 

individual de la planta. 

Cuadro 4.2.12 Pesos de contenedores para especies arbóreasa de Columbia Británica, con base en la pérdida de peso del 

agua. 

Peso del contenedor (Kg) 

Plantas Grupo 1 Plantas Grupo 2 Plantas Grupo 3 

Tipo 

de 

contenedor 

Tensión 

hídrica 

escasa 

Tensión 

hídrica 

moderada 

Tensión 

hídrica 

severa 

Tensión 

hídrica 

escasa 

Tensión 

hídrica 

moderada 

Tensión 

hídrica 

severa 

Tensión 

hídrica 

escasa 

Tensión 

hídrica 

moderada

Tensión 

hídrica 

severa 

Styroblock 

2A ® 

1.50 1.75 2.25 1.75 2.00 2.50 2.00 2.25 2.75 

Styroblock 

4A ® 

2.00 2.50 3.00 2.25 2.75 3.15 2.75 3.00 3.25 

SpencerLemaire 5 ® --- --- --- 0.80 0.90 1.00 0.90 1.00 1.10 

a Grupo de plantas 1 = Abies amabilis (Pacific silver fir), Tsuga mertensiana (mountain hemlock); grupo de plantas 2 = 

Pseudotsuga menziesii (Douglas fir) de la franja interior seca, Pinus contorta (lodgepole pine), Pinus ponderosa (ponderosa 

pine), Chamaecyparis nootkatensis (Alaska-cedar), Abies grandis (grand fir), Tsuga heterophylla (western hemlock), Picea 

glauca (white spruce), Picea engelmannii (Engelmann spruce); grupo de plantas 3 = Pseudotsuga menziesii (Douglas fir) de la 

costa, Pseudotsuga menziesii (Douglas fir) de la franja húmeda interior, Larix occidentalis (western larch) , Picea sitchensis 

(Sitka spruce) , Thuja plicata (western redcedar). Fuente: Matthews (1983b).

Cuadro 4.2.13 Escala de pesos de contenedores, 

desarrollada para plantas de coníferas en el Pacífico 

Noroeste. 

Etapa de cultivo de la planta Peso del riego 

(% del peso 

húmedo) 

Germinación 90 

Crecimiento rápido 80 

Endurecimiento 65-70 

Posterior al desarrollo de yema 75 

Empaque y almacenamiento 80-85 

Fuente: James Sedore, Washington Department of 

Natural Resources, Webster Forest Nursery, Olympia, 

Wa. 

Desarrollando de una escala de pesos de los 

contenedores usando el potencial mátrico del 

sustrato. Un método más científico y menos 

consumidor de tiempo, para determinar el peso del 

riego de un contenedor, está fundamentado en el 

potencial mátrico del sustrato (PMMC), el cual es 

una medida de la energía requerida para absorber 

humedad del medio de crecimiento. Los valores de 

PMMC, pueden ser obtenidos de curvas de 

retención de humedad del suelo, que ilustran la 

relación entre porcentaje de humedad del suelo, 

por peso, y el PMMC (Ver sección 4.2.2, para 

mayor discusión acerca de la terminología 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

112

relacionada con el potencial hídrico, y la sección 

4.2.3.1 para mayor información sobre las curvas de 

retención de humedad del suelo). Aunque esta 

técnica no es posible ajustarla por compactación 

del sustrato, y por el efecto del contenedor, es el 

medio más empírico para estimar el PMMC en los 

contenedores pequeños en la actualidad. La 

tecnología del futuro puede producir sensores lo 

suficientemente pequeños para supervisar 

directamente el PMMC, dentro del contenedor. 

Una curva típica de retención de humedad en el 

suelo, para un sustrato formulado con 50% de turba 

de musgo y 50% de vermiculita, se muestra en la 

figura 4.2.8. Una vez que la curva está estable, los 

valores de PMMC que tiene significancia biológica 

("valores objetivo") pueden ser leídos de la curva, 

junto con los contenidos de humedad del sustrato 

correspondientes; los contenidos de humedad 

exactos para valores específicos de PMMC pueden 

también ser determinados con pruebas de 

laboratorio, mientras se desarrolla la curva. Los 

valores objetivo de PMMC dados en el cuadro 

4.2.14, fueron tomados de la literatura. Day (1980) 

proporciona una excelente discusión acerca del 

seguimiento del riego en viveros que producen a 

raíz desnuda, y recomienda mantener un PMMC de 

entre -0.010 a -0.075 MPa para asegurar un buen 

balance de aireación y humedad. McDonald y 

Running (1979), recomiendan que el sustrato sea 

irrigado entre -0.050 y -0.080 MPa, en comparación 

con la recomendación de -0.055 MPa para un 

sustrato grueso con vermiculita (Puustjarvi et al., 

1972; citado por Hallett, 1982b). Con base en 

estas recomendaciones, los límites de la irrigación 

objetivo fueron establecidos en -0.010 MPa para el 

peso húmedo, y -0.050 MPa para el peso de riego 

(cuadro 4.2.14). 

Una vez que los valores objetivo de PMMC y de 

contenido de humedad del medio de crecimiento 

han sido establecidos (cuadro 4.2.14), las pérdidas 

de agua en peso del contenedor en cada uno de 

los puntos pueden ser calculados usando la 

siguiente relación, la cual es también la base para 

la curva de retención de humedad: 

En cuanto las pérdidas de agua en peso han sido 

calculadas para cada uno de los valores objetivo, 

una escala sensible de pesos en contenedor puede 

ser desarrollada, de modo que sea específica para 

cada tipo de contenedor (cuadro 4.2.14). Para las 

super celdas (Super Cells), las plantas en la fase 

de crecimiento rápido deberán ser mantenidas 

entre -0.01 y -0.05 MPa de PM del sustrato, que 

equivale a pérdidas de peso en agua de entre 4.04 

y 5.77 kg. Para inducir la tensión hídrica (-0.10 

MPa) durante el periodo de endurecimiento, se 

puede permitir que los pesos del contenedor 

desciendan por debajo de las condiciones ideales 

de humedad, aproximadamente 6.26 kg para las 

super celdas (Super Cells) (cuadro 4.2.14). Sin 

embargo, es imposible prescribir con precisión un 

PM del medio de crecimiento para la fase de 

endurecimiento, porque la tensión hídrica de la 

planta es una función de la demanda evaporativa y 

de la fisiología de la misma, en adición a los niveles 

de humedad del suelo (ver sección 4.2.7.3). 

El desarrollo de una escala de peso para los 

contenedores, requiere de un gran esfuerzo y de 

mucha toma de datos, pero el peso de los 

contenedores es una de las pocas técnicas 

objetivas, no destructivas y repetibles, para la 

revisión del riego en los viveros que producen en 

contenedor. El peso del contenedor es también la 

mejor manera para determinar las necesidades de 

riego temprano en la etapa de crecimiento, antes 

que las plantas sean lo suficientemente grandes 

para mostrar tensión hídrica, o para usar la cámara 

de presión. 

4.2.6.3 Supervisando el potencial hídrico de la 

planta con la cámara de presión. 

Las lecturas de potencial hídrico de la planta 

(PHP), representan la forma más precisa para 

determinar el estado de la humedad de una planta 

y las mediciones con una cámara de presión (fig. 

4.2.5), antes del alba, pueden dar una excelente 

indicación de las necesidades de riego (ver la 

sección 4.2.2.3 para obtener información básica del 

PHP). Day (1980), recomienda que en cada vivero 

obtenga y use la cámara de presión; McDonald 

(1978) reporta que las cámaras de presión 

comenzaron a ser usadas en un 10 a 15% de los 

viveros forestales en el oeste de los Estados 

Unidos. 

La principal limitante de esta técnica es que es 

destructiva, y que las plantas deben ser lo 

suficientemente grandes para ajustarse en el 

orificio de la cámara, lo cual significa que no puede 

ser usada al inicio del ciclo de cultivo. Cuando se 

trata de plantas de mayor tamaño, pueden ser 

usadas acículas individuales o fascículos de 

acículas; Ritchie (1984), ilustra una modificación a 

la cámara de presión que acomoda acículas 

individuales de coníferas y que permite realizar 

mediciones de PHP en la misma planta. McDonald 

y Running (1979), describen un método para 

relacionar lecturas en la cámara de presión con 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

113

requerimientos de humedad, y la dificultad para 

interpretar valores de PHP realizados al medio día. 

Day y Walsh (1980), desarrollaron un manual para 

el uso de cámaras de presión en viveros y trabajos 

de reforestación, el cual incluye procedimientos 

para obtener material de muestra, y para operar la 

cámara: 

1. Los tallos u otras partes de la planta a ser 

probadas, deben ser obtenidas con un corte 

limpio, y no deben ser vueltas a cortar. 

2. La corteza alrededor del tallo de la planta 

debe ser removida, antes de la prueba; se 

recomienda una longitud estándar de 2 cm 

(0.8 pulgadas). 

3. La parte de la planta no debe sobresalir de la 

tapa de la cámara de presión más de 1 ó 2 cm 

(0.4 a 0.8 pulgadas). 

4. Las mediciones de PHP deben ser hechas no 

más de 5 minutos después del corte del tallo 

de la planta. 

5. El gas comprimido debe ser aplicado a una 

tasa constante de 0.04 a 0.07% MPa (5 a 10 

psi) por segundo. 

6. Las partes de la planta deben ser medidas 

sólo una vez, para luego ser desechadas. 

A reserva de la conveniencia de la técnica con 

cámara de presión, para el seguimiento del riego 

en los viveros, existen pocos estándares 

publicados para su uso por los viveristas. Un 

esquema generalizado de respuesta de la planta a 

un intervalo de valores de PHP tomados antes del 

alba, se proporciona en el cuadro 4.2.15. Las 

lecturas de la cámara de presión deberán ser 

obtenidas siempre que sea posible, antes del alba, 

pues éstas representan la más estable indicación 

del estado de humedad que guarda la planta. 

Algunos científicos recomiendan lecturas al medio 

día, pero estos valores son muy variables como 

para ser usados con fines operativos (ver figura 

4.2.4, para observar un patrón diurno típico de 

PHP). Aunque existen algunas diferencias 

significativas entre especies, una regla general 

puede ser el regar cuando los valores de PHP, 

tomados antes del alba, excedan de -0.5 MPa. 

Cleary et al. (1978), establece que los periodos de 

tensión hídrica escasa (alrededor de -0.5 MPa), 

promueven la robustez y un mejor 

acondicionamiento de las plantas, en comparación 

con las sobreirrigadas. Nunca debe permitirse que 

la tensión hídrica en las plantas exceda de -1.0 

MPa, a menos que se desee inducir una reducción 

en el crecimiento o la dormición. 

Cuadro 4.2.14 Escala de peso para contenedores de dos tipos, desarrollada de una curva de retención de humedad para 

el suelo, para un sustrato formulado con 50% de turba de musgo y 50% de vermiculita. 

Valores objetivo Pérdida de agua en la bandeja 

de contenedores (kg) 

Potencial 

mátrico del 

sustrato (Mpa) 

Contenido de 

humedad del 

sustrato (%) 

Ray Leach 

Pine Cells ® 

Ray Leach 

Super Cells ® 

Guías de condición de la planta y de riego 

0.00 482 0.00 0.00 Medio saturado-muy húmedo 

-0.01 235 3.49 4.04 Límite superior para la fase de crecimiento 

rápido-peso húmedo 

-0.05 130 4.94 5.77 Límite inferior para la fase de crecimiento 

rápido-peso de riego 

-0.10 98 5.40 6.26 Fase de endurecimiento-tensión hídrica 

--- 0 6.76 7.89 Medio anhidro 

Fuente: Burr (1982). 

Cuadro 4.2.15 Respuesta en crecimiento e implicaciones de cultivo al inducir tensión hídrica en plantas de coníferas del 

oeste, en viveros del noroeste. 

Potencial hídrico de la planta 

(antes del alba) 

Calificación de 

tensión hídrica 

Respuesta de la planta / implicaciones de 

Mpa Bars Cultivo 

0.0 a –0.5 0-5 Somera Crecimiento rápido 

-0.5 a -1.0 5-10 Moderada Crecimiento reducido/bueno para endurecimiento en general 

-1.0 a -1.5 10-15 Alta Crecimiento restringido /resultados variables en el endurecimiento 

-1.5 a -2.5 15-25 Severa Potencial de daño 

< -2.5 >25 Extrema Daño o mortalidad 

Fuente: modificado de Cleary et al. (1978). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

114

4.2.7 El Riego como Tratamiento de Cultivo - Determinando qué tanto Regar 

Una vez que se ha tomado la decisión de regar, el 

siguiente paso es determinar qué tanta agua 

deberá aplicarse por evento de riego. La cantidad 

de agua puede ser descrita en términos de 

profundidad (centímetros) o de volumen de agua 

(litros) por unidad de área, y las estimaciones sobre 

qué tanta agua aplicar, se dan en la sección 

4.2.4.1. No obstante, sobre una base operativa, los 

eventos de riego normalmente son controlados por 

relojes, en el caso de sistemas de riego fijos, o por 

el número de pasos, en el de sistemas móviles. 

Ambos necesitan ser determinados empíricamente 

para las condiciones de cada vivero. 

El concepto más importante en el riego de 

contenedores, es aplicar suficiente agua durante 

cada evento, un poco más de lo necesario para 

saturar el medio, de modo que ocurra una poca de 

lixiviación. Debido a las propiedades únicas de los 

sustratos en contenedores (ver sección 4.2.3.2), 

debe ser aplicada suficiente agua en la superficie, 

para forzar al aire a salir de los poros del sustrato. 

Ya que el riego en los viveros forestales que 

producen en contenedores sólo es aplicado desde 

arriba, este "frente" de agua se mueve hacia abajo, 

a través sustrato, tanto como continúe el riego; si el 

periodo de riego es muy breve, el agua nunca 

alcanzará el fondo del contenedor, y resultará una 

tabla de agua suspendida, con una capa de 

sustrato seco. A causa de esto, es importante no 

regar parcialmente el cultivo de plantas en 

contenedores, porque sólo la parte superior del 

sustrato será humedecida (Nelson, 1978). 

Si el sustrato de los contenedores no está 

completamente saturado después de cada riego, la 

planta nunca desarrollará raíces en el sustrato seco 

en el fondo del contenedor, resultando un cepellón 

pobremente formado. Otro peligro es que las sales 

fertilizantes se acumularán en el sustrato, y 

originarán daños por salinidad, o "quema por 

fertilizantes". La regla general es aplicar 

aproximadamente 10% de agua adicional, con 

respecto a la requerida para saturar el perfil entero 

del medio de crecimiento, en cada riego. El mejor 

procedimiento es verificar, para estar seguros, que 

el drenaje esté ocurriendo durante o 

inmediatamente después del riego, esto mediante 

inspección directa, o fijando un frasco o una bolsa 

de plástico al fondo del contenedor, para colectar el 

lixiviado (Para obtener más información acerca de 

la salinidad y de un procedimiento para determinar 

el lixiviado adecuado, ver las secciones 4.1.3.4 y 

4.1.9.2). 

La cantidad de riego a aplicar varía durante la 

etapa de cultivo, debido a las diferentes etapas de 

desarrollo de la planta, y a los objetivos de cultivo 

del viverista. Puesto que el agua es tan esencial 

para el crecimiento de la planta, el régimen de riego 

puede ser manipulado para controlar el crecimiento 

de la misma. 

4.2.7.1 Regando durante la fase de 

establecimiento. 

Inmediatamente después que los contenedores ya 

sembrados son colocados en el área de 

crecimiento, el sustrato deberá estar 

completamente saturado. Antes de la germinación 

de la semilla, la mayor pérdida de humedad es por 

evaporación de la parte superior del contenedor 

(fig. 4.2.12A). El riego durante este período, sin 

embargo, debe ser aplicado para rehumedecer esta 

delgada capa superficial, lo cual se cumplirá de 

mejor forma a través de las frecuentes 

nebulizaciones o de los riegos ligeros. Los riegos 

poco frecuentes, facilitarán que la semilla se seque 

y que pueda reducirse la germinación, mientras que 

el riego excesivo puede causar condiciones 

excesivamente húmedas alrededor de la semilla, y 

promover la “chupadera”. 

El riego puede ser también usado para controlar la 

temperatura alrededor de las semillas en 

germinación. Éstas, particularmente aquellas con 

cubiertas seminales de color oscuro, pueden ser 

dañadas por elevadas temperaturas en el sustrato. 

Matthews (1983b) recomienda riegos si las 

temperaturas superficiales exceden los 30o

C 

(86o

F). 

4.2.7.2 Regando durante la fase de crecimiento 

rápido. 

Una vez que el sistema radical de la plántula se ha 

establecido, el patrón de uso del agua cambia y la 

transpiración gradualmente reemplaza a la 

evaporación como la principal fuente de pérdida de 

agua (fig. 4.2.12B). Cuando la planta se hace lo 

suficientemente grande para sombrear 

completamente la parte superior del contenedor, la 

superficie de evaporación declina y se hace 

insignificante, en comparación con la transpiración. 

Debido al "efecto de contenedor" (ver sección 

4.2.3.2), una pequeña zona con medio de 

crecimiento saturado puede existir al fondo del 

contenedor, la profundidad dependerá de la 

porosidad del sustrato (fig. 4.2.9) y de la longitud 

del contenedor (fig. 4.2.10). Puesto que el agua 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

115

disponible será removida de la parte superior del 

contenedor en primer término, la salinidad se hará 

mayor en el reservorio pequeño de solución del 

sustrato en el fondo, lo cual remarca la necesidad 

de un frecuente lixiviado. En efecto, uno de los 

signos aparentes de problemas de salinidad, es la 

costra de sal alrededor de la perforación de drenaje 

del contenedor. 

La mayoría de los manuales de contenedores 

existentes (Carlson, 1983; Tinus y McDonald, 

1979), recomiendan mantener el sustrato a 

"capacidad de campo" para maximizar las tasas de 

crecimiento. Sin embargo, algunos especialistas 

de vivero, creen que los periodos regulares con 

ligera tensión hídrica resultarán en un crecimiento 

más robusto de las plantas. Cleary et al. (1978), 

recomienda inducir períodos con una "moderada 

tensión hídrica" entre riegos para las plantas de 

Pseudotsuga menziesii (Douglas fir) costero, 

permitiendo que el PHP alcance más de 0.5 MPa 

antes del riego. Este concepto está reflejado en los 

intervalos de PHP recomendados en el cuadro 

4.2.15. Matthews (1983b) es partidario de un 

programa de riego con períodos alternos húmedossecos, para minimizar la proliferación de musgos, 

algas y hepáticas. No obstante, los viveristas 

deberán estar conscientes de que cada especie 

reacciona de manera diferente a cualquier práctica 

de cultivo, así que deberán ser conducidas unas 

pruebas operativas antes de adoptar la aplicación 

de tensión hídrica como una práctica estándar. 

Otro factor que debe ser considerado cuando se 

programa la irrigación, es el efecto de la 

intercepción del follaje. Aunque el follaje de una 

plántula joven está limitado en cobertura, las hojas 

de plantas más grandes, especialmente de 

especies de latifoliadas, pueden causar una 

reducción significativa en la cantidad de riego que 

alcance la superficie del sustrato. La duración del 

periodo de riego debe, por tanto, ser ajustada 

periódicamente durante la estación de cultivo, para 

compensar las pérdidas debidas a intercepción. 

4.2.7.3 Regando durante la fase de 

endurecimiento. 

Se ha encontrado que la manipulación del régimen 

de riego es una de las formas más efectivas para 

iniciar el endurecimiento de plantas antes de su 

almacenamiento o embarque. Dado que el 

crecimiento de las plantas está tan críticamente 

relacionado con los niveles de tensión hídrica, un 

viverista puede reducir el crecimiento en altura, 

inducir desarrollo de yemas, o iniciar el desarrollo 

de resistencia al frío, en muchas especies 

producidas en contenedor, mediante la práctica de 

cultivo de inducir tensión hídrica (fig. 4.2.31). Este 

procedimiento de "tensionamiento por sequía" 

consiste en retener el riego durante periodos cortos 

de tiempo, hasta que las plantas comiencen a 

mostrar marchitez, o hasta que se alcance alguna 

tensión hídrica predeterminada. Después de este 

tratamiento tensionante, el cultivo es reincorporado 

a su programa de riego. Matthews (1983b) 

recomienda un tratamiento de tensión hídrica para 

inducir el desarrollo de yemas después de que se 

alcanza un adecuado crecimiento en altura (cuadro 

4.2.12); este período de tensión hídrica puede 

durar hasta 14 días, dependiendo de la especie. 

Timmins y Tanaka (1976), encontraron que las 

plantas sometidas a tensión hídrica fueron más 

pequeñas en diámetro y que tuvieron menores 

pesos anhidros de la raíz y de la parte aérea, en 

comparación con las plantas sin tensión, pero que 

también tuvieron significativamente más yemas 

terminales, las cuales también se formaron más 

temprano. Estos autores concluyen que los niveles 

moderados de tensión hídrica incrementaron la 

capacidad de endurecimiento de las plantas ante el 

frío. 

Figura 4.2.31 La tensión hídrica puede ser usada para 

controlar el crecimiento de la parte aérea de algunas 

plantas producidas en contenedor, aunque esta práctica 

de cultivo puede ser difícil de ser aplicada 

uniformemente. 

En una revisión reciente acerca de los efectos de la 

tensión hídrica en la calidad de las plantas, Joly 

(1985) enlista dos efectos fisiológicos y 

morfológicos del déficit de humedad en plantas 

producidas a raíz desnuda, que pueden ser de 

utilidad para los viveristas que producen en 

contenedor: 

1. Un incremento en la tensión hídrica puede ser 

usada para inducir dormición en la planta 

durante el inicio del verano, hasta mediados de 

éste (Zaerr et al., 1981). 

2. Los valores medios de PHP (-0.5 a -1.0 MPa), 

durante mediados del verano, iniciarán la 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

116

secuencia de eventos que conduzcan a la 

adquisición de resistencia ante el frío (Blake et 

al., 1979). 

Pueden ser agragados dos efectos más: 

3. Los niveles moderados de tensión hídrica (-1.0 

a -1.5 MPa), pueden ser usados para retardar el 

inconveniente crecimiento tardío de la parte 

aérea, aunque este tratamiento reduzca el 

endurecimiento ante el frío (Blake et al., 1979). 

4. Christenson (1976), demostró que tanto 

las plantas de Pino como de Picea, producidas 

en contenedor, podían ser endurecidas gracias 

a la imposición de un periodo de tensión hídrica, 

y que estas plantas endurecidas podían tolerar 

una más severa tensión hídrica (-3.5 MPa), en 

comparación con las plantas no endurecidas 

(-2.5 MPa). 

La tensión hídrica, como tratamiento de cultivo, 

puede ser afectada por otras condiciones 

ambientales. Blake et al. (1979), puntualizan que 

los efectos de los tratamientos de tensión hídrica 

sobre el endurecimiento de las plantas, están 

afectados por el fotoperíodo. Las tensiones 

hídricas moderadas sólo resultaron efectivas bajo 

los largos días del verano, o el equivalente 

fotoperíodo extendido en el ambiente de un 

invernadero. 

También es importante considerar que los 

tratamientos de cultivo mediante riego pueden 

tener resultados detrimentales. La irrigación 

frecuente prolongada hasta finales del verano, 

puede retrasar el desarrollo normal de la 

resistencia a las heladas (Lavender y Cleary, 

1974). La aplicación de un tratamiento de tensión 

hídrica bajo un fotoperiodo corto, puede inhibir el 

desarrollo de la resistencia ante heladas (van den 

Driessche, 1969). 

Un problema con el establecimiento operativo de la 

tensión hídrica como práctica de cultivo, es el que 

puede ser considerable la variación en la humedad 

del sustrato entre contenedores adyacentes. 

Debido a las diferencias en la aplicación del riego, y 

en el uso del agua por la planta, es difícil alcanzar 

un nivel promedio uniforme de potencial hídrico en 

las plantas, en un invernadero. Otro problema 

operativo, es que si se permite que el sustrato se 

seque en exceso, puede hacerse hidrofóbico y 

dificultar así su rehumedecimiento, aún con el 

empleo de agentes humectantes. 

La mayoría de las investigaciones acerca de estas 

técnicas han sido realizadas con Pseudotsuga 

menziesii (Douglas fir) de la costa, o con otras 

especies costeras, así que los viveristas deberán 

considerar este hecho al interpretar los resultados. 

Matthews (1986), reportó recientemente que la 

tensión hídrica puede no funcionar bien con las 

espeices de Picea (spruce) del interior, en los 

viveros de Columbia Británica, y concluye que esta 

importante práctica de cultivo aún debe ser 

considerada "más un arte que una ciencia". Los 

viveristas deberán conducir sus propias pruebas de 

tensionamiento hídrico a escala operativa, para 

determinar el efecto sobre sus propias especies, en 

sus respectivos ambientes de cultivo. A reserva de 

estas advertencias, la inducción de tensiones 

hídricas moderadas, como las presentadas en el 

cuadro 4.2.15, deberán ser consideradas como una 

técnica de cultivo para manipular la fisiología y la 

morfología de la planta. Una discusión posterior 

del proceso de endurecimiento, incluyendo la 

tensión hídrica, se proporciona en el capítulo de 

endurecimiento, en el volumen seis de esta serie. 

4.2.7.4 Regando como protección ante heladas. 

Las plantas en contenedor que son producidas en 

áreas de cultivo a la intemperie, o almacenadas 

bajo cubiertas, pueden requerir protección contra 

las temperaturas congelantes durante el otoño o 

primavera, en los climas con temperaturas 

extremas invernales. Un apropiado proceso de 

endurecimiento, ayudará a proteger la parte aérea 

contra el daño por helada, aunque un tiempo 

atmosférico inusualmente frío a veces puede ocurrir 

repentinamente, antes que la planta haya tenido 

tiempo de adquirir suficiente rusticidad. Las raíces 

no pueden alcanzar un alto grado de resistencia 

ante el frío, y siempre deberán ser aisladas cuando 

las plantas van a ser almacenadas bajo 

condiciones expuestas (más información sobre el 

proceso de endurecimiento puede ser encontrada 

en el capítulo de endurecimiento, en el volumen 

seis de esta serie). 

Una excelente discusión sobre el uso de riego con 

aspersores, para protección ante heladas en 

viveros forestales que producen a raíz desnuda, es 

proporcionada por McDonald (1984), y los mismos 

principios básicos se aplican a los viveros que 

producen en contenedor. El riego mediante 

aspersores protege contra el daño por frío porque 

se libera calor cuando el agua se congela sobre el 

follaje de la planta, y la capa de hielo proporciona 

algún grado de aislamiento. Sin embargo, la 

principal protección viene del calor liberado por el 

agua en congelación, y este efecto protector dura 

sólo tanto como el riego continúe siendo aplicado. 

El riego deberá comenzar tan pronto como la 

temperatura descienda bajo el punto de 

congelación, y continuar hasta que el hielo se 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

117

derrita. En algunos viveros, se prueba a las plantas 

en cuanto a resistencia contra heladas, y se basan 

en estas pruebas para determinar cuándo debería 

comenzar la protección. La protección ante 

heladas mediante riego con aspersores, no puede 

proteger contra las severas heladas "duras", pero 

se han logrado salvar cultivos agrícolas sometidos 

a temperaturas tan bajas como -8o

C (17oF). La 

cantidad de agua a aplicar como protección ante 

heladas, varía con la temperatura y con la 

velocidad del viento. Algunas sugerencias respecto 

a tasas de riego a aplicar, son proporcionadas en el 

cuadro 4.2.16 (Hansen et al., 1979). 

Cuadro 4.2.16 La cantidad de riego necesario como 

protección ante heladas, varía con la temperatura y con 

la velocidad del viento (se muestran tres intervalos de 0 a 

5 km/h) 

Temperatura de Tasa de riego (mm/h) 

la planta 

(

o

C) 

0-0.05 

km/h 

1.0-2.5 

km/h 

3.0-5.0 

km/h 

-3 2.5 2.5 2.5 

-4 2.5 3.5 5.5 

-5 3.0 5.0 -- 

-6 3.5 6.5 -- 

-8 5.0 -- -- 

Fuente: Hansen et al. (1979). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

118

4.2.8 Disposición del Agua de Riego Residual 

4.2.8.1 Eficiencia del riego con aspersores. 

El riego con aspersores que es comúnmente usado 

en la mayoría de los viveros forestales que 

producen en contenedor, es muy ineficiente. 

Handreck y Black (1984), estimaron que menos de 

un tercio del agua de riego aplicada con 

aspersores, alcanza el sustrato. No existen datos 

publicados para viveros forestales, pero 

Weatherspoon y Harrell (1980) compararon 

aspersión desde arriba y riego por goteo en un 

vivero ornamental: los aspersores de impulso 

tuvieron una eficiencia de riego (esto es, el 

porcentaje de agua aplicada retenida por el 

sustrato) de 26%, y los aspersores giratorios 

tuvieron una eficiencia todavía menor de 13% . El 

riego móvil de aguilones puede ser más eficiente 

que los sistemas de riego fijos, pues el agua es 

aplicada sólo a las plantas, más que a toda el área 

de cultivo. La eficiencia del riego gradualmente 

disminuirá durante la etapa de crecimiento, 

conforme las copas de las plantas intercepten y 

derramen una cada vez mayor cantidad del agua 

aplicada. Muchos viveros ornamentales que 

producen en contenedores, han adoptado el riego 

por goteo o subirrigación, para incrementar sus 

eficiencias de riego, pero los pequeños 

contenedores usados en los viveros forestales, y la 

necesidad de podar raíces mediante contacto con 

el aire, hacen imprácticos a estos sistemas de 

riego. 

4.2.8.2 Manejando agua residual de un vivero. 

El problema de una pobre eficiencia de riego, 

involucra más que simplemente agua de desecho, 

porque en muchos viveros que producen en 

contenedor aplican algunos o todos sus fertilizantes 

y plaguicidas mediante los sistemas de riego. El 

fertilizante líquido usualmente es aplicado en 

exceso, con respecto a la cantidad de agua 

requerida para saturar el sustrato y para estimular 

el lixiviado del exceso de sales. La mayoría de los 

plaguicidas son aplicados en el agua a través del 

sistema de riego, y algunos de estos productos 

químicos inevitablemente finalizan en el agua de 

desecho; los sustratos empapados resultan 

particularmente serios en este aspecto. 

Pruebas recientes han revelado que los nutrientes 

de las excesivas fertilizaciones y los plaguicidas, se 

lixivian y contaminan las fuentes de agua 

subterráneas. Originalmente se pensaba que el 

suelo filtraba estas impurezas, y que por tanto las 

aguas subterráneas se mantenían puras, pero esta 

teoría recientemente ha sido refutada. Una 

investigación de la "Organización de Contabilidad 

Gubernamental (GAO)" (Government Accounting 

Organization), encontró que el 29% de los 65 000 

sistemas de agua comunitarios en los Estados 

Unidos, eran incapaces de cumplir con los 

estándares federales mínimos de calidad del agua 

potable. La "Agencia de Protección Ambiental 

(EPA)" (Environmental Protection Agency), 

actualmente está conduciendo una investigación 

nacional sobre plaguicidas en el agua potable, que 

cuando sea concluida proporcionará buenos datos 

para visualizar este problema (Urbano, 1987). 

Dos elementos fertilizantes, el nitrógeno y el 

fósforo, han sido identificados como 

particularmente peligrosos para el ambiente o para 

la salud del ser humano. El nitrógeno nítrico (NO3

-

) 

es particularmente peligroso: el agua conteniendo 

más de 10 ppm de NO3

-

 puede causar una 

enfermedad en los niños, denominada 

metemoglobinemia (methemoglobinemia), la cual 

involucra la incapacidad de usar el oxígeno (Rosen 

et al., 1986). El agua de desecho de los viveros 

forestales que producen en contenedor, 

indudablemente contendrá cantidades significativas 

de fertilizante nitrogenado, si el anión NO3

-

 no es 

absorbido por el sustrato y se lixivia de los 

contenedores con el agua de riego. Mucha de la 

solución de fertilizante líquido aplicada, es 

derramada por el follaje de las plantas grandes, o 

cae fuera del área de cultivo y va directamente al 

agua de desecho. Urbano (1987), reporta que de 

un tercio a un medio de los nitratos aplicados como 

fertilizantes, están finalizando en las fuentes de 

agua subterránea. El fósforo lixiviado en los lagos 

puede causar un proceso de incremento de algas y 

malas hierbas acuáticas, denominado eutroficación. 

Se desconoce qué tan serio es el problema de la 

cantidad de fertilizante con P lixiviado de los 

viveros, porque el P se fija e inmobiliza en el suelo. 

En un estudio sobre escorrentía de tormentas hacia 

uno lagos en Minneapolis, MN, se encontró que el 

contenido de P no se podía incrementar con el P de 

la fertilización (Roser et al., 1986). 

Urbano (1987), reporta que la cantidad de 

herbicidas y plaguicidas que alcanzan el agua 

subterránea, es mucho más pequeña (0.1%) que la 

cantidad de nutrientes de fertilizantes, aunque se 

desconoce la toxicidad de muchos de estos 

productos químicos. El problema no es hipotético, 

porque en 1979 se encontró una extensiva 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

119

contaminación de pozos de riego con el herbicida 

Temik® (aldicarb) en Long Island, NY, y se 

sospecha la contaminación de aguas subterráneas 

con este plaguicida en otros estados (Urbano, 

1987). 

Las implicaciones del exceso de fertilizante y 

plaguicidas en el agua de desecho son obvias, pero 

no se han establecido estándares aceptables para 

muchos plaguicidas. Algunos estándares de 

calidad para aguas de descarga han sido 

establecidos en el sur de California (cuadro 4.2.17). 

Florida tiene uno de los programas más rigurosos 

de supervisión de aguas subterráneas en los 

Estados Unidos, haciendo pruebas para 129 

productos químicos distintos. La acción del estado 

más reciente que afectará a los viveristas, es la 

Propuesta 65 en California (la "iniciativa de 

tóxicos"), la cual requerirá la regulación de más de 

200 sustancias químicas potencialmente peligrosas 

(Urbano, 1987). 

Al aceptar el hecho de que existe una considerable 

cantidad de agua de desecho, los viveristas están 

comenzando a considerar las formas para enfrentar 

el problema. El enfoque de cualquier programa de 

control deberá fundamentarse en la prevención, 

porque no hay manera de retirar los productos 

químicos una vez que han contaminado el agua 

subterránea (Urbano, 1987). Skimina (1986), 

estudió tres alternativas para manejar el agua de 

desecho de riegos en un vivero de California que 

produce en contenedores: descargarla en 

alcantarillas, desnitrificarla, y reciclarla. Dicho autor 

encontró que el reciclamiento fue la única opción 

práctica, y diseñó una infraestructura de 

tratamiento de aguas (fig. 4.2.32), que produce 

agua "lo suficientemente pura para beberla". El 

agua reciclada fue probada en 106 plantas 

ornamentales, y la mayoría de las plantas de 

prueba tuvieron un mejor crecimiento que las 

plantas cultivadas con el agua de riego original; sin 

embargo, no es empleada operativamente en 

estacado ni con otras especies sensibles. El costo 

de construcción de la planta de tratamiento es de 

US $1.3 millones, y los costos de operación son de 

US$ 0.08 por kl (US$ 0.30 por galón) (Skimina, 

1986). El programa de tratamiento también ha 

producido varios beneficios colaterales, como la 

recuperación de fertilizante, pero uno de los 

beneficios más significativos, ha sido el de las 

buenas relaciones comunitarias que han resultado 

del proyecto de reciclamiento (Urbano, 1987). 

La mayoría de los viveros forestales no están 

enclavados en áreas muy pobladas, y la 

disposición de las aguas de desecho puede no ser 

una preocupación seria en la actualidad. Sin 

embargo, indudablemente, el problema de la 

disposición del agua de desecho se hará más 

significativo en el futuro, y los viveristas deberán 

estar preparados para lidiar con él. 

Cuadro 4.2.17 Estándares de calidad del agua, para 

desechos de riego, establecidos por la Directiva del 

Control de Calidad del Agua de Los Ángeles ("Los 

Angeles Water Quality Control Board"). 

Parámetros de calidad del 

agua 

Límite* 

Sólidos disueltos totales 750 ppm 

Nitrógeno nítrico 10 ppm 

Cloro 175 ppm 

Cloro y sulfato 500 ppm 

Cromo 0.01 ppm 

Sólidos en suspensión 75 ppm 

Demanda biológica de oxígeno 30 ppm 

Aceites y grasas 15 ppm 

Surfactantes 0.50 ppm 

Hidrocarburos clorados 0.004 ppm 

Turbidez 75 ntu 

Sólidos estabilizables 0.2 ml/l 

*1 ppm = 1 mg/l; ntu = unidad de turbidez nefrotometro. 

Fuente: Skimina (1986). 

Figura 4.2.32 Esquema del tratamiento de aguas de 

riego y de la planta de reciclamiento que está en uso en 

un vivero en California (Skimina, 1986). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

120

4.2.9 Conclusiones y Recomendaciones

A causa de la importancia preponderante del agua 

para el crecimiento de la planta, el manejo del agua 

mediante el riego es una de las operaciones de 

cultivo más críticas en los viveros forestales que 

producen en contenedor. La comprensión de las 

relaciones básicas entre planta y agua, es de 

utilidad en el manejo de los viveros; el estado del 

agua de una planta forestal puede describirse 

mejor en términos del potencial hídrico. El 

potencial hídrico es la forma más práctica para 

describir el estado del agua en la planta, porque los 

principios y unidades se mantienen iguales en el 

sustrato, a través de la planta, y en la atmósfera. 

El potencial hídrico en el sustrato o en la misma 

planta, pueden ser separados en componentes que 

el viverista puede manejar para alcanzar la 

apropiada cantidad y calidad de crecimiento de la 

misma. 

El agua debe ser manejada diferencialmente en los 

viveros forestales que producen en contenedores, 

en comparación con una operación a raíz desnuda. 

El "suelo artificial", compuesto por materiales como 

la turba de musgo y la vermiculita, tiene diferentes 

propiedades físico químicas, en comparación con el 

suelo natural, incluyendo una mayor capacidad de 

retención de humedad. El contenedor también 

tiene un efecto en las propiedades del agua del 

sustrato, porque el agua no puede drenarse por 

completo del contenedor, lo cual resulta en una 

capa saturada en el fondo del medio de 

crecimiento. La profundidad de esta capa está en 

función de la longitud del contenedor, y de las 

propiedades del sustrato. 

La cantidad y la calidad del agua de riego es 

probablemente la consideración más importante en 

la selección y operación de un vivero forestal que 

produce en contenedor. Deben estar disponibles 

suficientes cantidades de agua a través del año 

para abastecer todos los diferentes usos en el 

vivero. La calidad del agua de riego en el vivero, 

primariamente está en función de la concentración 

y de la composición de las sales disueltas, aunque 

la presencia de hongos fitopatógenos, semillas de 

malezas, algas y plaguicidas, también debe 

considerarse. A causa de que los tratamientos de 

agua son imprácticos y costosos la mayoría de las 

veces, las fuentes de agua para riego deberían ser 

probadas cuidadosamente durante la selección del 

sitio para instalar el vivero. Las plántulas de 

especies forestales son muy sensibles a las sales 

solubles, así que el agua deberá ser probada 

durante todas las etapas del proceso de riego, a 

intervalos regulares, durante el periodo de cultivo. 

Las plantas forestales en contendores comúnmente 

son regadas con algún tipo de sistema de riego con 

aspersores aéreos, tanto fijos como sobre una 

estructura móvil. El riego móvil proporciona una 

cobertura mas uniforme, pero está sujeto a fallas 

mecánicas. Diferentes tipos de aspersores 

estacionarios están disponibles y funcionarán 

satisfactoriamente si son adecuadamente 

diseñados y mantenidos. Cualquier sistema de 

riego debe ser probado periódicamente, para estar 

seguros de que funciona adecuadamente. 

La determinación de cuándo y qué tanto regar, es 

una de las decisiones más importantes que 

cotidianamente toma el viverista. Debido a las 

limitaciones físicas de los pequeños contenedores 

empleados en los viveros forestales, actualmente 

no hay una forma de verificar directamente el 

potencial hídrico del sustrato dentro del contenedor. 

Los viveristas con experiencia, desarrollaron una 

habilidad intuitiva para determinar cuándo se 

requiere riego, usando la apariencia y el tacto del 

sustrato, y el peso relativo del contenedor. Cuando 

las plantas son más grandes, una cámara de 

presión puede ser usada para medir directamente 

el potencial hídrico de las mismas. Debido a las 

restrictivas características del drenaje en los 

contenedores, los viveristas deben aplicar 

suficiente agua durante cada evento de riego, para 

saturar todo el volumen del sustrato, y que fluya el 

exceso de sales por el fondo del contenedor. La 

cantidad de agua proporcionada en cada riego, es 

función de la etapa de crecimiento de las plantas y 

de las condiciones ambientales. Además de 

promover una rápida germinación y crecimiento de 

la planta, el agua puede ser utilizada como una 

herramienta de cultivo para ayudar a que las 

plantas adquieran resistencia y para inducir la 

dormición. En climas fríos y en cultivos al aire libre, 

el riego también puede ser usado como protección 

de las plantas ante las heladas. 

Debido a las excesivas cantidades de riego 

requeridas y a la baja eficiencia de los sistemas 

aspersores, la disposición del agua de desecho 

representa una consideración importante en el 

manejo de los viveros que producen en contenedor. 

Los fertilizantes inyectados, como el nitrógeno 

nítrico y el fósforo, y los plaguicidas aplicados con 

el sistema de riego, pueden afectar la calidad del 

agua subterránea, y podrían representar un 

problema en aquellos viveros ubicados en áreas 

urbanas. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

121

4.2.10 Referencias 

Ayers, R.S. 1977. Quality of water for irrigation. 

Journal of the Irrigation and Drainage Division 

103(IR2): 135-154. 

Ballard, T.M.; Dosskey, M.G. 1985. Needle water 

potential and soil-to-foliage flow resistance 

during soil drying: a comparison of Douglas-fir, 

western hemlock, and mountain hemlock. 

Canadian Journal of Forest Research 15: 185-

188. 

Baker, K.F.; Matkin, O.A. 1978. Detection and 

control of pathogens in water. Ornamentals 

Northwest Newsletter 2(2): 12-14. 

Blake, J.; Zaerr, J.; Hee, S. 1979. Controlled 

moisture stress to improve cold hardiness and 

morphology of Douglas-fir seedlings. Forest 

Science 25(4): 576-582. 

Bunt, A.C. 1976. Modern potting composts: a 

manual on the preparation and use of growing 

media for pot plants. University Park, PA: The 

Pennsylvania State University Press. 277 p. 

Burr, K. 1982. Personal communication. USDA 

Forest Service, Rocky Mountain Forest and 

Range Experiment Station, Flagstaff, AZ. 

California Fertilizer Association, Soil Improvement 

Committee. 1985. Western Fertilizer 

Handbook. Danville, IL: Interstate Printers and 

Publishers, Inc. 288 p. 

Carlson, L.W. 1983. Guidelines for rearing 

containerized conifer seedlings in the Prairie 

Provinces. Inf. Rep. NOR-X-214E. Edmonton, 

Alberta: Canadian Forestry Service, Northern 

Forest Research Centre. 64 p. 

Carpenter, W.J.; Rasmussen, H.P. 1970. 

Temperature effect of greenhouse water on 

rose and chrysanthemum turgidity, stomate 

behavior, growth and flowering. Journal of the 

American Society of Horticultural Science 95(5): 

578-582. 

Christersson, L. 1976. The effect of inorganic 

nutrients on water economy and hardiness of 

conifers. II. The effect of varying potassium 

and calcium contents on water status and 

drought hardiness of pot-grown Pinus silvestris 

L. and Picea abies (L.) seedlings. Studia 

Forestalia Suecica 136: 1-23. 

Christiansen, J.E. 1942. Irrigation by sprinkling. 

Bull. 670. Berkeley, CA: University of 

California, College of Agriculture, Agricultural 

Experiment Station. 124 p. 

Chu, P.C.H. 1986. Your irrigation water sample. 

International Plant Propagators Society 

Combined Proceedings 35: 682-684. 

Cleary, B. D. 1971. The effect of PMS on the 

physiology and establishment of planted 

Douglas-fir and ponderosa pine seedlings. 

Corvallis, OR: Oregon State University. 85 p. 

PhD Thesis. 

Cleary, B.D.; Greaves, R. D.; Owsten, P.W. 1978. 

Seedlings. In: Cleary, B.D.; Greaves, R.D.; 

Hermann, R.K., comps., eds. Regenerating 

Oregon ́s forests: a guide for the regeneration 

forester. Corvallis, OR: Oregon State 

University Extension Service: 63-97. 

Daughtry, B. 1984. Chlorination of irrigation water. 

International Plant Propagators Society 

Combined Proceedings 33: 596- 599. 

Davidson, H.; Mecklenburg, R. 1981. Nursery 

management: administration and culture. 

englewood. Cliffs, NJ: Prentice-Hall, Inc. 450 

p. 

Day, R.J. 1980. Effective nursery irrigation 

depends on regulation of soil moisture and 

aeration. In: Proceedings North American 

forest tree nursery soils workshop; 1980 July 

28-August 1; Syracuse, NY. Syracuse, NY: 

State University of New York, College of 

Environmental Science and forestry: 52-71. 

Day, R.J.; Walsh, S.J. 1980. A manual for using the 

pressure chamber in nurseries and plantations. 

Silv. Rep. 1980-2. Thunder Bay, ON: Lakehead 

University, School of forestry. 49 p. 

Dixon, M.A.; Tyree, M.T. 1984. A new stem 

hygrometer, corrected for temperature 

gradients and calibrated against the pressure 

bomb. Plant, Cell and environment 7:693-697. 

Fischer, G. 1987. Personal communication. 

University of California, Davis. 

Fitzpatrick, G.E.; Verkade, S.D. 1987. Monitor your 

irrigation supply. American Nurseryman 165(2): 

108-111. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

122

Frink, C.R.; Bugbee, G.J. 1987. Response of 

potted plants and vegetable seedlings to 

chlorinated water. HortScience 22(4): 581-

583; 1987. 

Fuller, W.H.; Halderman, A.D. 1975. Management 

for the control of salts in irrigated soils. Bull. A43. Tucson, AZ: University of Arizona. 11 p. 

Furuta, T. 1978. Environmental plant production 

and marketing. Arcadia, CA: Cox Publishing 

Company. 232 p. 

Gartner, J.B. 1981. Container nurseries need 

proper water sources. American Nurseryman 

153(2): 10, 82. 

Green, J.L. 1987. Personal communication. 

Corvallis, OR: Oregon State University 

Horticulture Department. 

Hallett, R.D. 1982a. Contrasting approaches to 

containerized seedling production. 3. the 

maritimes provinces. In: Scarratt, J.B.; Glerum, 

C.; Plexman, C.A., eds. Proceedings of the 

Canadian containerized tree seedling 

symposium; 1981 September 14-16; Toronto, 

Ontario. COJFRC Symposium Proceedings OP-10. Sault Ste. Marie, Ontario: Canadian 

Forestry Service, Great Lakes Forest Research 

Center: 129-138. 

Hallett, R.D. 1982b. Monitoring crop development 

during the rearing of containerized seedlings. 

In: Scarrett, J.B.; Glerum, C.; Plexman, C.A., 

eds. Proceedings of the Canadian 

containerized tree seedling symposium; 1981 

September 14-16; COJFRC Symposium 

Proceedings O-P-10. Toronto, Ontario. Sault 

Ste. Marie, Ontario: Canadian Forestry 

Service, Great Lakes Forest Research Centre: 

245-253. 

Hallett, R.D. 1987. Personal communication. 

Hanan, J.J.; Holley, W.D.; Goldsberry, K.L. 1978. 

Greenhouse - management. Berlin: SpringerVerlag. 530 p. 

Handreck, K.A.; Black, N.D. 1984. Growing media 

for ornamental plants and turf. Kensington, 

NSW, Australia: New South Wales University 

Press. 401 p. 

Hansen, V.E.; Israelsen, O.W.; Stringham, G.E. 

1979. Irrigation principles and practices. New 

York: John Wiley and Sons. 417 p. 

Hartmann, H.T.; Kester, D.E. 1983. Plant 

propagation, principles and practices. 

Englewood Cliffs, NJ: Prentice-Hall, Inc. 727 p. 

Joly, R.J. 1985. Techniques for determining 

seedling water status and their effectiveness in 

assessing stress. In: Duryea, M.L. ed. 

Evaluating seedling quality: principles, 

procedures, and predictive abilities of major 

tests. Proceedings of the Workshop; 1984 

October 16-18; Corvallis, OR. Corvallis, OR: 

Oregon State University, Forest Research 

Laboratory; 1985: 17- 28. 

Jones, J.B. Jr. 1983. A guide for the hydroponic 

and soilless culture grower. Portland, OR: 

Timber Press. 124 p. 

Kaufmann, M.R. 1975. Leaf water stress in 

Engelmann spruce: influence of the root and 

shoot environments. Plant Physiology 56: 841-

844. 

Kozlowski, T.T. 1943. Transpiration rates of some 

forest tree species during the dormant season. 

Plant Physiology 18: 252- 260. 

Kramer, P.J. 1983. Water relations of plants. New 

York: Academic Press. 489 p. 

Kramer, P.J.; Kozlowski, T.T. 1979. Physiology of 

woody plants. New York: Academic press. 811 

p. 

Krizek, D.T. 1985. Methods of inducing water 

stress in plants. HortScience 20(6): 1028-1038. 

Landis, T.D. 1982. Irrigation water quality in tree 

nurseries in the inland west. In: Proceedings of 

the 1981 Intermountain Nurserymen ́s Meeting; 

1981 August 11-13; Edmonton, Alberta. Inf. 

Rep. NOR-X-241. Canadian Forestry Service, 

Northern Forest Research Centre: 60-67. 

Langhans, R.W. 1980. Greenhouse management, 

second ed. Ithaca, NY: Halcyon Press. 270 p. 

Lavender, D.P.; Cleary, B.D. 1974. Coniferous 

seedling production techniques to improve 

seedling establishment. In: Tinus, R.W.; Stein, 

W.I.; Balmer, W.E. eds. Proceedings of the 

North American containerized forest tree 

seedling symposium; 1974 August 26-29; 

Denver, CO. Great Plains Agricultural Council 

Publication No. 68: 177-180. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

123

Matthews, R.G. 1986. Irrigation management. 

Presented at the Forest Nursery Association of 

British Columbia Annual Meeting; Harrison, BC; 

Sept. 15-18. 

Matthews, R.G. 1983a. Seedling production for 

crown lands in British Columbia: guidelines for 

commercial container nurseries. Victoria, BC: 

British Columbia Ministry of Forests, Silviculture 

Branch: 45 p. 

Matthews, R.G. 1983b. Quality control procedures 

for container nurseries. Rep. 955-21-1-2. 

Victoria, BC: British Columbia Ministry of 

Forests, Silviculture Branch; 36 p. 

Matthews, R.G. 1982. Contrasting approaches to 

containerized seedling production. 1. British 

Columbia. In: Scarratt, J.B.; Glerum, C.; 

Plexman, C.A. eds. Proceedings of the 

Canadian containerized tree seedling 

symposium; 1981 September 14-16; COJFRC 

Symposium Proceedings O-P-10. Toronto, ON. 

Sault Ste. Marie, ON: Canadian Forestry 

Service, Great Lakes Forest Research Centre: 

115-122. 

McDonald, S.E. 1978. Irrigation monitoring in 

western forest tree nurseries. In: Proceedings 

of Western Forest Nursery Council and 

Intermountain Nurseryman ́s Association 

Combined Nurseryman ́s Conference and See 

Processing Workshop. 1978 August 7-11; 

Eureka, CA. San Francisco, CA: U.S. 

Department of Agriculture, Forest Service, 

State and Private Forestry: B-16 to B-49. 

McDonald, S.E.; Running, S.W. 1979. Monitoring 

irrigation in western forest tree nurseries. Gen. 

Tech. Rep. RM-61. Ft. Collins, CO: U.S. 

Department of Agriculture, Forest Service, 

Rocky Mountain Forest and Range Experiment 

Station. 8 p. 

McDonald, S.E. 1984. Irrigation in forest-tree 

nurseries: monitoring and effects on seedling 

growth. In: Duryea, Mary L.; Landis, Thomas 

D., eds. Forest nursery manual: production of 

bareroot seedlings. The Hague: Martinus 

Nijhoff/Dr W. Junk for Forest Research 

Laboratory, Oregon State University, Corvallis, 

OR: 107-121. 

Mclntosh, D.L. 1966. The occurrence of 

Phytophthora spp. in irrigation systems in 

British Columbia. Canadian Journal of Botany 

44(12): 1591-1596. 

Myers, J. 1987. Personal communication. 

Nelson, Paul V. 1978. Greenhouse operation and 

management. Reston, VA: Reston Publishing 

Company, Inc. 518 p. 

Newman, E.I. 1965. Relationship between root 

growth of flax (Linum usitatissimum) and soil 

water potential. New Phytologist 65: 273-283. 

Pair, C.H.; Hinz, W.H.; Frost, K.R.; Sneed, R.E.; 

Schiltz, T.J. 1983. Irrigation. Arlington, VA: 

The Irrigation Association. 686 p. 

Richards, L.A., comp. 1969. Diagnosis and 

improvement of saline and alkali soils. Agric. 

Handb. 60. Washington, DC: U.S. Department 

of Agriculture. 160 p. 

Ritchie, G.A. 1984. Assessing seedling quality. In: 

Duryea, M. L.; Landis, T.D. eds. Forest nursery 

manual: production of bareroot seedlings. The 

Hague: Martinus Nijhoff/Dr W. Junk Publishers, 

for Forest Research Laboratory, Oregon State 

University, Corvallis, OR. 243-259. 

Rosen, C.J.; Taylor, D.H.; White, D.B. 1986. Use 

fertilizer wisely to combat groundwater 

pollution. American Nurseryman 164(12): 41-

45. 

Seeley, J.G.; Steiner, J.R. 1965. Soil temperature 

and the growth of greenhouse carnations. 

Proceedings of the American Society for 

Horticultural Science 86: 631-639. 

Shearer, M.N. 1981. Requirements for quality 

irrigation. In: Proceedings of Intermountain 

Nurseryman ́s Association and Western Forest 

Nursery Council Combined Meeting; 1980 

August 12- 14; Boise, ID. Gen. Tech. Rep. INT109 U.S. Department of Agriculture, Forest 

Service, Intermountain Forest and Range 

Experiment Station. 107-112. 

Skimina, C.A. 1986. Recycling irrigation runoff on 

container ornamentals. HortScience 21(1): 32-

34. 

Slatyer, R.O. 1967. Plant-water relationships. New 

York: Academic Press. 366 p. 

Spomer, L.A. 1985. Techniques for measuring 

plant water. Hort Science 20(6): 1021-1028. 

Swanson, B.T. 1984. Irrigation water quality effects 

a plant ́s health and salability. American 

Nurseryman 159(10): 67-69. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

124

Tchobanoglous, G.; Schroeder, E.D. 1985. Water 

quality: characteristics, modeling, modification. 

Menlo Park; CA: Addison-Wesley Publishing 

Co. 768 p. 

Timmis, R.; Tanaka, Y. 1976. Effects of container 

density and plant water stress on growth and 

cold hardiness of Douglas-fir seedlings. Forest 

Science 22(2): 167-172. 

Tinus, R.W.; McDonald, S.E. 1979. How to grow 

tree seedlings in containers in greenhouses. 

Gen. Tech. Rep. RM-60. Ft. Collins, CO: U.S. 

Department of Agriculture, Forest Service, 

Rocky Mountain Forest and Range Experiment 

Station. 256 p. 

Urbano, C.C. 1987. Toxic water: it could be the 

most pressing problem facing your business 

and your family. American Nurseryman 165(2): 

38-44, 48-53. 

Vance, B.F. 1975. Water quality and plant growth. 

International Plant Propagators Society 

Combined Proceedings 25: 136-141. 

van den Driessche, R. 1969. Influence of moisture 

supply, temperature, and light on frosthardiness changes in Douglas-fir seedlings. 

Canadian Journal of Botany 47: 1765-1772. 

Vetanovetz, R.P.; Knauss, J.F. 1988. Water quality. 

Greenhouse Manager 6(2): 64-66, 68-69, 72. 

Weatherspoon, D.M.; Harrell, C.C. 1980. 

Evaluation of drip irrigation for container 

production of woody landscape plants. 

HortScience 15(4): 488-489. 

Whitcomb, C.E. 1984. Plant production in 

containers. Stillwater, OK: Lacebark 

Publications. 638 p. 

White, J.W. 1964. The concept of "container 

capacity" and its application to soil-moisturefertility regimes in the production of containergrown crops. The Pennsylvania State 

University. PhD Dissertation. 

Willingdon, T. 1986. Irrigation management. 

Presented at the Forest Nursery Association of 

British Columbia. Annual Meeting; Harrison, 

BC; Sept. 15-18, 1986. 

Willingdon, T. 1987. Personal communication. 

Zaerr, J.B.; Cleary, B.D.; Jenkinson, J.L. 1981. 

Scheduling irrigation to induce seedling 

dormancy. In: Proceedings of Intermountain 

Nurseryman ́s Association and Western Forest 

Nursery Association Combined Meeting; 1980 

August 12-14; Boise, ID. Gen. Tech. Rep. INT109. Ogden, UT: U.S. Department of 

Agriculture, Forest Service, Intermountain 

Forest and Range Experiment Station: 74-79. 

Zimmerman, J.D. 1966. Irrigation. New York: John 

Wiley and Sons, Inc. 516 p. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

125

Índice de Nombres Científicos y Comunes 

Árboles 

Páginas 

Fresno 

Fraxinus pennsylvanica Marsh (green ash) 90 

F. americana L. (white ash) 12 

Abedul 

Betula papyrifera Marsh (paper birch) 11,12,14

Casuarina 

Casuarina cunninghamiana Miq (river-oak, casuarina, “beefwood”) 90

“Cedro”/Junipero 

Chamaecyparis nootkatensis (D. Don) Spach (Alaska cedar) 111

Juniperus virginiana L. (eastern redcedar) 90

Thuja plicata Donn ex D. Don (western redcedar) 110,111

Cítricos 

Citrus spp. (citrus) 98

Pseudotsuga 

Pseudotsuga menziesi (Mirb.) Franco (Douglas fir) 23,24,29,63,64,85,89,90,110,111,115,116

Abetos 

Abies balsamea (L.) Mill (balsam fir) 63

A. grandis (Dougl. ex D. Don) Lindl. (grand fir) 111

A. amabilis Dougl. ex Forbes (pacific silver fir) 111 

Abeto americano 

Tsuga mertensiana (Bong.) Carr (mountain hemlock) 110,111

T. heterophylla (Raf.) Sarg. (western hemlock) 110,111

Alerce 

Larix occidentalis Nutt. (western larch) 23,110,111

Magnolia 

Magnolia grandiflora L. (southern magnolia) 90

Maple 

Acer saccharum L. (sugar maple) 12

A. rubrum L. (red maple) 12,63,68

Pinos 

Pinus halepensis Miller (Aleppo pine) 90

P. strobus L. (eastern white pine) 98

P. banksiana Lamb. (jack pine) 13,15,23,25,38,61,64

P. thunbergiana Franco (Japanese black pine) 29

P. radiata D.Don (Monterey pine) 15,70

P. taeda L. (loblolly pine) 51,52,62,63,70,98

P. contorta Dougl. ex Loud. (lodgepole pine) 63,111

P. ponderosa Dougl ex Laws. (ponderosa pine) 62,63,90,111 

P. sylvestris L. (Scotch pine) 23,63,67,68,121

P. echinata Mill. (shortleaf pine) 63 

P. resinosa Ait (red pine) 59,70
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

126

Páginas 

Alamo 

Populus tremuloides Michx. (quaking aspen) 23 

Olivo ruso 

Eleagnus angustifolia L. (Russian olive) 90

Atriplex 

Atriplex spp. (saltbush) 90

Piceas 

Picea mariana (Mill.) B.S.P. (black spruce) 12,14,59,64,65

P. pungens Engelm. (blue spruce) 89,90

P. engelmannii Parry ex Engelm. (Engelmann spruce) 98,111

P. abies (L.) Karst. (Norway spruce) 23,68,121

P. rubens Sarg. (red spruce) 10

P. sitchensis (Bong.) Carr. (Sitka spruce) 110,111

P. glauca (Moench) Voss (white spruce) 10,11,15,52,61,63,64,110,111

Hongos y Micorrizas 

Botrytis cinerea Pers. Fr. (grey mold) 51

Phytophthora cinnamomi Rands 93,96,123

Pythium spp. 93

Otras Plantas 

Algas 87,93,95,97,115,118,120

Hepáticas 93,95,97,115

Musgo 83,93,112,113,115,120

Animales 

Venado 64

Ante 64
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Volumen 4: Fertilización y Riego

Esta publicación contó con la autorización y 

apoyo correspondiente del Servicio Forestal, 

del Departamento de Agricultura de los Estados 

Unidos.

 

La edición e impresión de este manual corrió a 

cargo de la Dirección General del Programa 

Nacional de Reforestación

Tiraje: 1,000 ejemplares 

Octubre del 2000