1

Manual de Viveros para la 

Producción de Especies 

Forestales en Contenedor 

Volumen Cuatro 

Fertilización y Riego

 

Capítulo 1 

Nutrientes Minerales 

y Fertilización 

Thomas D. Landis, Especialista en Viveros, Región Oeste, 

Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, 

Dasonomía Estatal y Privada, Portland, Oregon, E.U.A. 

Landis, T.D. 1989. Mineral nutrients and fertilization. In: 

Landis, T.D.; Tinus R.W.; McDonald, S.E.; Barnett, J.P. The 

Container Tree Nursery Manual, Volume 4. Agric. Handbbk. 

674. Washington, DC: U.S. Department of Agriculture, 

Forest Service: 1-67. 
2

Contenido 

Página 

4.1.1 Nutrientes Minerales Esenciales 4 

4.1.2 Nutrientes Minerales y Crecimiento 6

4.1.2.1 Absorción y utilización de nutrientes 6 

4.1.2.2 Síntomas de deficiencia nutricional 7 

Síntomas de deficiencia de nitrógeno 8 

Síntomas de deficiencia de fósforo 8 

Síntomas de deficiencia de magnesio 11 

Síntomas de deficiencia de micronutrientes 11 

4.1.3 Factores Físicos y Químicos que Afectan la Disponibilidad de Nutrientes 13

4.1.3.1 Medio de crecimiento 13 

4.1.3.2 Volumen del contenedor 14 

4.1.3.3 Relacion entre el pH y la nutrición mineral 14 

Una definición práctica de pH 14 

Efecto del pH en la disponibilidad de iones nutrentes 14 

El pH óptimo para el cultivo de especies forestales 15 

4.1.3.4 Contenido de humedad en el medio de crecimiento 15 

4.1.3.5 Salinidad de la solución del medio de crecimiento 15 

4.1.4 Características de los Fertilizantes 17

4.1.4.1 Fertilizantes con macronutrientes 17 

Forma 17 

Grado o análisis 17 

Fuente de nitrógeno 17 

Tasa de liberación de nutrientes 18 

Efecto de las propiedades químicas del medio de crecimiento 18 

Eficiencia en el uso por la planta 19 

Costo 19 

4.1.4.2 Fertilizantes con nutrientes secundarios 20 

4.1.4.3 Fertilizantes con micronutrientes 20 

Sales inorgánicas 21 

Quelatos sintéticos 21 

4.1.5 Determinando las Necesidades de Fertilizante 22

4.1.5.1 Concentración de nutrientes 22 

Unidades 22 

Nivel de nitrógeno 22 

4.1.5.2 Balance nutricional 24 

4.1.5.3 Ajuste por etapas de crecimiento de la planta 25 

4.1.6 Métodos de Fertilización 26 

4.1.6.1 Incorporando fertilizantes sólidos al sustrato 26 

Incorporación de fertilizantes con macronutrientes 27 

Incorporación de Fertilizantes con micronutrientes 30 

4.1.6.2 Inyectando soluciones de fertilizante al sistema de riego 31 

Tipos de sistemas de inyección de fertilizantes 31 

Fertilizantes comerciales para inyección 33 

Fertilizantes hechizos para inyección 33 

Fertilización foliar 34 

...Continuación 
3

Contenido (continuación) 

Página 

4.1.7 Formulando Soluciones de Fertilización 36

4.1.7.1 Determinando el nivel de nutrientes del agua de riego 36 

4.1.7.2 Controlando el pH del agua de riego 36 

4.1.7.3 Cálculos de la soluciones con fertilizantes comerciales 37 

Macronutrientes 37 

Micronutrientes 38 

4.1.7.4 Cálculos de fertilizante para las mezclas hechizas 40 

Selección de productos químicos 40 

Mezclando las soluciones de fertilizante 40 

Ejemplo de cálculos 42 

4.1.8 Programando y Aplicando la Solución de Fertilización 51

4.1.8.1 Técnicas de aplicación 51 

4.1.8.2 Momento para la primera fertilización 51 

4.1.8.3 Programando las aplicaciones de fertilizante durante la etapa de cultivo 52 

4.1.9 Supervisando la Fertilización 55

4.1.9.1 Qué medir cuando se supervisa la fertilización 55 

Conductividad eléctrica 55 

Niveles de nutrientes minerales 55 

pH 55 

4.1.9.2 Etapas a supervisar durante la fertilización 56 

Agua de riego 56 

Solución de fertilizante disponible 56 

Solución de fertilizante aplicada 56 

Solución del medio de crecimiento 57 

Lixiviado 60 

4.1.9.3 Análisis nutricional de las plantas 60 

Recolección y manejo de la muestra 60 

Estándares e interpretación de los resultados del análisis nutricional de plantas 60 

4.1.10 Efectos del uso de Altas Concentraciones de Fertilizante 62

4.1.10.1 Consumo excesivo de nitrógeno y calidad de la planta 62 

4.1.10.2 El nivel ideal de nitrógeno en la fertilización 64 

4.1.11 Conclusiones y Recomendaciones 66 

4.1.12 Referencias 67
4

4.1.1 Nutrientes Minerales Esenciales

La importancia de la nutrición mineral en la calidad 

y cantidad del crecimiento en plantas de especies 

forestales producidas en contenedor, no debe ser 

sobreenfatizada. Probablemente, más que ninguna 

otra práctica de cultivo, con la posible excepción 

del riego, la fertilización controla tanto la tasa como 

el tipo de crecimiento. 

La terminología de nutrición vegetal contiene varios 

términos que son imprecisos técnicamente. En el 

argot de la ciencia vegetal, los nutrientes 

"minerales" son los elementos esenciales que las 

plantas obtienen del suelo. No obstante, acorde 

con la definición química estricta, el término mineral 

se refiere a un compuesto, más que a un grupo de 

elementos simples. El término "nutriente" es 

también comúnmente empleado para referirse a un 

elemento esencial, aunque ésta no es la definición 

científica exacta del término (Jones, 1983). 

Aunque esto puede no ser correcto desde el punto 

de vista etimológico, nosotros usaremos a lo largo 

del presente texto términos acerca de la nutrición 

vegetal establecidos por convencionalismo, tal 

como nutriente mineral. 

Los efectos benéficos resultantes de agregar 

sustancias "minerales" al suelo, como ceniza de 

madera o limo, para mejorar el crecimiento en las 

plantas, han sido conocidos por más de 2,000 

años. No fue sino hasta el siglo XIX que, gracias a 

las observaciones y especulaciones de Justus von 

Liebig, se formuló la "teoría de los elementos 

minerales", la cual establece que elementos como 

el nitrógeno, el azufre, el fósforo, y otros, son 

"esenciales" para el crecimiento de las plantas 

(Marschner, 1986). Los términos elemento 

mineral esencial y nutriente mineral, fueron 

propuestos por dos fisiólogos vegetales de la 

Universidad de California, en 1939. En este 

histórico artículo, Arnon y Stout (1939) 

establecieron tres criterios de esencialidad (Jones, 

1983; Marschner, 1986): 

1. La omisión del elemento debe resultar en 

crecimiento anormal, en la incapacidad para 

completar todas las fases del ciclo de vida, o 

en la muerte prematura de la planta. 

2. La función del elemento debe ser específica, y 

no reemplazable por algún otro elemento. 

3. El elemento debe ejercer un efecto directo en 

el crecimiento y metabolismo de la planta; ser 

un constituyente de la planta, como el caso de 

una enzima; o ser requerido para un proceso 

metabólico distinto, tal como una enzima de 

reacción. De acuerdo con esta definición, los 

elementos minerales que tengan efectos 

indirectos en el crecimiento de las plantas, no 

son considerados como esenciales. 

Han sido identificados trece elementos esenciales 

para el crecimiento de plantas superiores, aunque 

se ha probado que el cloro es esencial sólo para un 

número limitado de especies (Marschner, 1986). 

Para nuestra conveniencia, los trece elementos 

están clasificados en seis macronutrientes, que son 

usados por las plantas en cantidades relativamente 

grandes, y en siete micronutrientes, que son 

requeridos en muy pequeñas cantidades (cuadro 

4.1.1). Los macronutrientes son constituyentes de 

compuestos orgánicos, como las proteínas y los 

ácidos nucleicos, o actúan en la regulación 

osmótica, y por lo tanto son encontrados en 

cantidades relativamente grandes en los tejidos 

vegetales. Los micronutrientes, por el otro lado, 

primeramente son constituyentes de enzimas, y se 

encuentran en proporciones relativamente 

pequeñas en los tejidos vegetales (cuadros 4.1.1 y 

4.1.2). 
5

Cuadro 4.1.1 Información química acerca de los trece nutrientes esenciales. 

Elemento o ion Símbolo 

químico 

Porcentaje de tejido 

vegetal 

(peso anhidro %) 

Peso atómico Peso equivalente 

(b) 

Macronutrientes 

Nitrógeno N 1.5 14.0 4.7 

Nitrato(a) NO3- - 62.0 62.0 

Amonio(a) NH4+ - 18.0 18.0 

Fósforo P 0.2 31.0 10.3 

Fosfato(a) H2PO4- - 97.0 97.0 

Potasio K 1.0 39.1 39.1 

Calcio Ca 0.5 40.1 20.0 

Magnesio Mg 0.2 24.3 12.2 

Azufre S 0.1 32.1 8.0 

Sulfato(a) SO4

2- --- 96.0 48.0 

Micronutrientes 

Hierro Fe 0.01 55.8 18.6 

Manganeso Mn 0.005 54.9 27.5 

Zinc Zn 0.002 65.4 32.7 

Cobre Cu 0.0006 63.6 31.8 

Boro B 0.002 10.8 3.6 

Cloro Cl 0.01 35.5 35.5 

Molibdeno Mo 0.00001 96.0 32.0 

(a) Forma nutrimental más común del elemento. 

(b) Con iones de diferentes valencias, se usa la forma más común. 

Fuente: modificado de Hanan et al. (1978), y de Epstein (1972). 

Cuadro 4.1.2 Características bioquímicas de los nutrientes minerales esenciales. 

Elementos esenciales Forma utilizada por las plantas Funciones bioquímicas en las plantas 

Grupo 1 

Carbono (C) 

Hidrógeno (H) 

Oxígeno (O) 

Nitrógeno (N) 

Azufre (S) 

En la forma de CO2, H2O, O2, NO3

-

NH4+, SO4

2

-: los iones de la 

solución del medio de crecimiento, 

los gases de la atmósfera 

Constituyentes mayores del material orgánico. 

Elementos esenciales de grupos atómicos 

involucrados en procesos enzimáticos. 

Asimilación por reacciones de oxidaciónreducción. 

Grupo 2 

Fósforo (P) 

Boro (B) 

En forma de fosfatos, ácido bórico, 

o borato de la solución del medio 

de crecimiento 

Esterificación con grupos nativos de alcohol en 

plantas. Los ésteres fosfato están involucrados 

en reacciones de transferencia de energía. 

Grupo 3 

Potasio (K) 

Magnesio (Mg) 

Calcio (Ca) 

Manganeso (Mn) 

Cloro (Cl) 

En forma de iones de la solución 

del medio de crecimiento 

Funciones no específicas estableciendo 

potenciales osmóticos. Reacciones más 

específicas para que la conformación de 

proteína enzima sea llevada a un nivel óptimo 

(activación de enzima). Puenteando socios de 

reacción. Balanceando aniones indifundibles y 

difundibles. 

Grupo 4 

Hierro (Fe) 

Cobre (Cu) 

Zinc (Zn) 

Molibdeno (Mo) 

En forma de iones o quelatos, de 

la solución del medio de 

crecimiento. 

Presente predominantemente en una forma de 

quelato, incorporado a grupos fotosintéticos. 

Posibilita el transporte de electrones por 

cambio de valencia. 

Fuente: modificado de Jones (1983). 
6

4.1.2 Nutrientes Minerales y Crecimiento

La comprensión de cómo la fertilización afecta el 

crecimiento de especies forestales en 

contenedores es esencial para el diseño e 

implementación de un programa de fertilización en 

vivero. Los fertilizantes se descomponen en iones 

en una solución acuosa: por ejemplo, el sulfato de 

amonio [(NH4)2SO4] produce iones amonio (NH4+) 

e iones sulfato (SO4

2

). Estos iones son adsorbidos 

en los sitios de intercambio catiónico en las 

partículas del medio de crecimiento, como la turba 

o la vermiculita, o se mantienen en la solución del 

medio de crecimiento hasta que son absorbidos por 

el sistema radical de la planta (fig. 4.1.1). Una 

planta forestal, como cualquier planta, obtiene 

como iones esos elementos minerales de la 

solución del suelo, si bien algunos nutrientes 

pueden también ser tomados como moléculas o 

complejos orgánicos. La molécula de urea, que es 

una forma soluble del nitrógeno, también puede ser 

absorbida por las raíces de las plantas así como 

algunos quelatos complejos de micronutrientes, 

como es FeEDTA (ver sección 4.1.4.3) (Jones, 

1983). 

Figura 4.1.1 Los iones nutrientes minerales son 

absorbidos directamente de la solución del medio de 

crecimiento de alrededor de la raíz, que se vuelve a 

llenar por medio del intercambio catiónico con las 

partículas del medio de crecimiento (adaptado de 

Donahue et al., 1977). 

4.1.2.1 Absorción y utilización de nutrientes. 

El proceso de absorción de nutrientes es 

complicado y va más allá del enfoque de este 

manual. La absorción de nutrientes por las plantas 

puede ser dividida en absorción activa y en pasiva. 

La absorción pasiva significa que los iones son 

llevados dentro de la raíz de la planta mediante el 

flujo del agua transpiracional. Los factores que 

controlan la absorción pasiva son el volumen de 

agua moviéndose dentro de la planta (demanda 

transpiratoria) y la concentración de los iones en la 

solución del medio de crecimiento que rodea a las 

raíces. La absorción activa ocurre cuando los 

iones son tomados en contra del gradiente de 

presión osmótica que normalmente existe entre las 

células de la raíz y la solución del medio de 

crecimiento. El proceso bioquímico involucrado en 

la absorción pasiva no está del todo comprendido, 

pero existe acuerdo general en que la absorción 

pasiva es el mecanismo dominante. Existen tres 

aspectos que debemos conocer acerca de la 

absorción de nutrientes por las plantas (Jones, 

1983). 

1. La planta es capaz de absorber iones 

selectivamente, aún cuando la concentración 

de iones y la proporción de la solución de 

alrededor pueda ser muy diferente que la que 

existe dentro de las células de la raíz. 

2. Los iones se acumulan en la raíz a través de 

un gradiente considerable. 

3. La absorción activa de iones requiere energía, 

la cual es generada por el metabolismo celular. 

Para un tratamiento completo de los aspectos 

bioquímicos de la absorción de nutrientes 

minerales por las plantas, el lector puede consultar 

a Marschner (1986) o a Black (1968). 

En el suelo o en el medio de crecimiento, la 

disponibilidad de nutrientes minerales es afectada 

por el movimiento pasivo de iones con la solución 

del suelo, por difusión, y por el crecimiento de las 

raíces de las plantas (Barber, 1962). El 

movimiento pasivo de los iones a través de la raíz 

de la planta, con el agua del suelo durante la 

absorción transpiratoria es denominada "flujo de 

masa" (A, en la figura 4.1.2), la tasa de éste es 

controlada por la demanda transpiratoria. Dentro 

de la solución del medio de crecimiento que rodea 

a las raíces, los iones son absorbidos de la 

rizósfera (B, en la fig. 4.1.2), por la difusión pasiva 

(movimiento de una concentración relativamente 

elevada a una menor concentración), o por el 

proceso de absorción activa. Las plantas también 

alcanzan nutrientes minerales mediante la 

extensión de sus raíces (C, en la fig. 4.1.2), donde 

las puntas de las raíces crecen dentro de nuevos 

suministros de nutrientes minerales (Jones, 1983). 

Estos procesos son simplificados con aplicaciones 

de fertilizante líquido, porque las raíces de las 

plantas son periódicamente bañadas con un 

suministro fresco de solución nutritiva completa. 
7

Existe una relación característica entre la 

concentración de un ion nutriente en el tejido de la 

planta y su crecimiento (fig. 4.1.3). Cuando un 

nutriente está presente en bajas concentraciones 

en el tejido vegetal, se dice que está deficiente y 

limitado para el crecimiento. En el extremo inferior 

de este intervalo de deficiencia, la planta con 

frecuencia exhibe ciertas anormalidades visibles, y 

tales "síntomas de deficiencia" son característicos 

de la deficiencia de un nutriente en especial (ver 

sección 4.1.2.2). A pequeños incrementos de las 

concentraciones en el tejido, el nutriente está aún 

lo suficientemente deficiente como para limitar el 

crecimiento de las plantas, pero no tanto como 

para producir síntomas de deficiencia (fig. 4.1.3). 

Esta condición es denominada "necesidad oculta" 

porque, aunque el crecimiento de la planta es 

reducido, la deficiencia nutrimental es difícil de 

diagnosticar a simple vista. Los análisis de 

nutrientes en las plantas con frecuencia son útiles 

para identificar esta condición. 

Figura 4.1.2 Las raíces de las plantas pueden acceder a 

los iones nutrientes minerales del medio de crecimiento 

en tres formas: A- El flujo de masa durante la absorción 

transpiracional. B- Difusión o absorción activa en la 

superficie de la raíz. C- Extensión de la raíz hacia 

nuevas áreas en el medio de crecimiento (modificado de 

Jones, 1983). 

Cuando la disponibilidad de nutrientes minerales no 

es limitativa, el crecimiento de las plantas alcanza 

un comportamiento constante (fig. 4.1.3), llamado 

intervalo óptimo de nutrientes. El ancho de tal 

intervalo varía entre diferentes nutrientes, pero es 

en este intervalo donde acontece la maximización 

del crecimiento (Las concentraciones minerales 

normales que son consideradas adecuadas para 

las plantas de especies forestales en 

contenedores, son discutidas en la sección 

4.1.9.3). Cuando los nutrientes minerales están 

presentes en el medio de crecimiento en 

cantidades excesivas, las plantas pueden continuar 

tomando esos nutrientes aunque no exista ya un 

incremento medible en el crecimiento; esta 

condición es denominada "consumo excesivo" (fig. 

4.1.3). El consumo en exceso es relativamente 

común en los viveros que producen en contenedor, 

debido a un ambiente ideal de crecimiento y a la 

falta de los factores ambientales que limitan el 

crecimiento en condiciones naturales. 

Figura 4.1.3 La relación entre el crecimiento de las 

plantas y los niveles de nutrientes en los tejidos de la 

planta, siguen un patrón característico. El crecimiento 

aumenta con los niveles de concentración hasta un punto 

crítico (A). Más allá de este punto, el incremento de los 

niveles de los nutrientes ya no influye en un mayor 

crecimiento, pero permite un consumo excesivo, o 

incluso la toxicidad. 

Cuando las concentraciones de nutrientes en el 

tejido de las plantas alcanzan niveles 

extremadamente elevados, puede acontecer 

toxicidad nutricional, y el crecimiento de la planta 

puede disminuir (fig. 4.1.3); en casos extremos, las 

concentraciones excesivas de nutrientes, incluso 

pueden causar la muerte (el consumo excesivo y 

las repercusiones en el cultivo por el uso de exceso 

de fertilizante en estos viveros, se discuten a 

detalle en la sección 4.1.10). El reto es mantener 

la solución del medio de crecimiento con niveles 

óptimos de los 13 minerales esenciales, para 

maximizar el crecimiento de las plantas. 

4.1.2.2 Síntomas de deficiencia nutricional. 

Las deficiencias nutrimentales están caracterizadas 

por síntomas específicos y observables. Aunque 

existe variación considerable entre síntomas para 

diferentes especies forestales, se proporciona una 

lista de síntomas de deficiencia nutrimental típicos 

en el cuadro 4.1.3 Estos síntomas son de alguna 

utilidad en el diagnóstico de deficiencias de 

nutrientes, pero muchos (por ejemplo, la clorosis), 

pueden ser causados por deficiencias de varios 

nutrientes y, por tanto, el análisis de nutrientes en 

la planta con frecuencia es necesario para 

conseguir un diagnóstico preciso (ver sección 

4.1.9.3). También recuerde que para el momento 

en que los síntomas de deficiencia nutricional 

aparecen, una cantidad significativa de crecimiento 
8

ya se ha perdido (ver necesidad oculta de 

nutrientes, sección 4.1.2.1). 

Síntomas de deficiencia de nitrógeno. Los 

síntomas de deficiencia de nitrógeno (N), incluyen 

clorosis y reducción del crecimiento, comúnmente 

llamado “achaparramiento” (fig. 4.1.4A); la clorosis 

aparece primero sobre las hojas o acículas 

inferiores, pues el N es un elemento móvil dentro 

de la planta, y es transferido hacia el follaje nuevo 

(fig. 4.1.4B) (Compare este patrón con el de 

clorosis por deficiencias de hierro). El 

“achaparramiento” por deficiencia de N, 

comúnmente es fácil de diagnosticar, y fácil de 

corregir, porque las plantas con deficiencia 

responden rápidamente a las aplicaciones de 

fertilizante nitrogenado. 

Síntomas de deficiencia de fósforo. Estos 

síntomas son extremadamente variables entre 

especies y, por tanto, se dificulta la diagnosis de 

deficiencia de sólo este nutriente. Debido a que el 

fósforo (P) es requerido relativamente temprano en 

el desarrollo de las plantas, uno de los síntomas 

clásicos de deficiencia de P es el "corazón 

púrpura", en el que las nuevas acículas se tornan 

de un color morado (fig. 4.1.5A). Los síntomas de 

deficiencia de P en el follaje, varían desde ningún 

cambio en el color, hasta una tonalidad gris oscuro, 

rosa, o púrpura (fig. 4.1.5B), clorosis general, 

quemadura del márgen (fig. 4.1.5C), moteado 

clorótico entre las nervaduras (fig. 4.1.5D), y 

clorosis de las hojas inferiores (fig. 4.1.5E). Swan 

(1971), encontró que los síntomas de deficiencia de 

P varían entre dos especies diferentes de picea: 

Picea glauca (white spruce) muestra los síntomas 

característicos foliares de “achaparramiento” y 

coloración púrpura, mientras que Picea rubens

(red spruce) no muestra la tonalidad púrpura en las 

hojas, aunque también se aprecia la reducción del 

crecimiento. Obviamente los síntomas de 

deficiencia en el follaje por si solos no deben ser 

considerados para diagnosticar deficiencia de P. 

Cuadro 4.1.3 Síntomas de deficiencia de nutrientes en especies forestales. 

Síntomas de deficiencia 

Macronutrientes

Nitrógeno (N) Clorosis general, seguida de “achaparramiento”; en casos severos, el follaje es pequeño, de color 

amarillo-verde a amarillo; esto puede ser seguido por coloración púrpura, y eventualmente por 

una necrosis de las puntas de las hojas. Se distingue de la clorosis debida a deficiencia de hierro 

porque el follaje viejo es afectado primero. 

Fósforo (P) La planta entera con frecuencia queda “achaparrada”, aunque el tamaño del follaje puede o no 

resultar reducido. Los síntomas foliares son variables entre especies, con coloraciones desde 

verde claro, a amarillo o un tinte purpúreo. 

Potasio (K) Síntomas variables entre especies: follaje usualmente corto, clorótico, con algún color verde en la 

base; en casos severos, tonalidades obscuras y necrosis con muerte descendente desde la 

punta. La aparición de un color café y la necrosis también pueden ocurrir. 

Calcio (Ca) “Achaparramiento” y crecimiento mínimo en todos los meristemos; en casos severos, las yemas 

terminales pueden morir o detener su elongación. Las especies latifoliadas exhiben quemadura 

de las puntas y clorosis de las hojas más nuevas. La aparición de una tonalidad café y la muerte 

de las puntas de las raíces, también es común. 

Magnesio (Mg) Hojas con puntas amarillas o anaranjadas. A esto sigue necrosis en los casos severos. Las 

especies latifoliadas, frecuentemente exhiben necrosis internerval en las hojas. 

Azufre (S) Follaje desde clorótico hasta un amarillo-verde pálido, las hojas más jóvenes resultan más 

afectadas. Crecimiento limitado de las hojas y eventualmente necrosis en los casos severos. 

Micronutrientes

Hierro (Fe) La clorosis aparece primero en el follaje joven. En casos severos, el follaje es de un color 

amarillo brillante a blanco. 

Manganeso (Mn) Clorosis en el follaje, similar a la deficiencia de hierro. 

Zinc (Zn) Limitación extrema del crecimiento del follaje, con "mechones", o "enrosetamiento", seguido de 

muerte descendente de puntas en los casos extremos. 

Cobre (Cu) Acículas retorcidas en espiral, con las puntas amarillentas o con tonalidad bronce. 

Boro (Bo) Clorosis y necrosis de la yema terminal. 

Molibdeno (Mo) Clorosis, seguida de necrosis, empezando en la punta. 

Cloro (Cl) No están referidos síntomas de deficiencia para plantas de especies forestales. 

Fuentes: adaptado de Armson y Sadreika (1979), Erdmann et al. 

(1979), Hacskaylo et al. (1969), Morrison (1974), y Tinus y McDonald (1979). 
9

4.1.4A 

4.1.4B

Figura 4.1.4 Los síntomas típicos de deficiencia de 

nitrógeno son clorosis y “achaparramiento” (A, Picea

glauca) (white spruce). Frecuentemente sólo las hojas 

viejas están cloróticas (B, Betula papyrifera)(paper 

birch), pues el nitrógeno es un elemento móvil en las 

plantas. Compare este patrón de clorosis con el de la 

clorosis por deficiencia de hierro (A, cortesía de Ronald 

Hallett, Servicio Forestal Canadiense, Fredericton, NB; B, 

cortesía del Northern Hardwoods Laboratory (Laboratorio 

de Latifoliadas del Norte), Servicio Forestal del 

Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, 

Rhinelander, WI). 

4.1.5A 

4.1.5B 

Figura 4.1.5 Los síntomas de deficiencia de fósforo son 

variables entre especies. Las plántulas recién 

germinadas de Picea mariana (black spruce) (A), tienen 

las acículas primarias con un tono purpúreo, un síntoma 

denominado "corazón púrpura". Los síntomas de 

deficiencia foliar en plantas de especies latifoliadas 

incluyen manchas rojizas-rosadas en el Acer rubrum

(red maple) (B), clorosis general en el Fraxinus

americana (white ash) (C), clorosis del margen en el 

Acer saccharum (sugar maple) (D), hasta clorosis de las 

hojas viejas en el Betula papyrifera (paper birch) (E). (A, 

cortesía de Ronald Hallett, Servicio Forestal Canadiense, 

Fredericton, NB; B-E, cortesía del Laboratorio de 

Latifoliadas del Norte, Servicio Forestal, Departamento 

de Agricultura de los Estados Unidos, Rhinelander, WI). 
10

4.1.5C 

4.1.5.D 

4.1.5E 
11

4.1.6A 4.1.6B 

Figura 4.1.6 El magnesio es otro nutriente mineral cuyo principal síntoma de deficiencia es la clorosis. En el caso de las 

coníferas, la deficiencia se manifiesta como puntas amarillas en las acículas (A, Picea mariana)(black spruce), o como 

clorosis internerval en plántulas de especies latifoliadas (B, Betula papyrifera)(paper birch). (A, cortesía de Ronald Hallett, 

Servicio Forestal Canadiense, Fredericton, NB; B, cortesía del Laboratorio de Latifoliadas del Norte, Servicio Forestal, 

Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, Rhinelander, WI). 

Síntomas de deficiencia de magnesio. El 

magnesio es otro nutriente mineral cuya carencia 

produce una clorosis característica, con un patrón 

en puntas de las acículas en coníferas (fig. 4.1.6A), 

e internerval en las hojas de latifoliadas (fig. 

4.1.6B). 

Síntomas de deficiencia de micronutrientes. 

Los síntomas de deficiencia de micronutrientes son 

extremadamente variables entre nutrientes y 

especies. La clorosis por deficiencia de hierro (Fe), 

es una afección relativamente común en viveros 

hortícolas, y algunas especies son particularmente 

sensibles (Bunt, 1976). La clorosis es el primer 

síntoma de deficiencia menor de hierro, y esta 

condición usualmente se manifiesta primero en el 

follaje nuevo (fig. 4.1.7A). En casos severos, la 

planta entera llega a ser clorótica y “achaparrada”, 

y la afección es casi imposible de corregir en esta 

etapa. La deficiencia de cobre (Cu) es común en 

plantas cultivadas en medios de crecimiento con 

turba, y uno de los síntomas característicos son las 

acículas retorcidas y cloróticas en la parte terminal 

de la planta (fig. 4.1.7B). Las deficiencias de 

micronutrientes son difíciles de diagnosticar y 

corregir, pues los síntomas con frecuencia son el 

resultado de un desbalance entre varios 

micronutrientes distintos. Los análisis de 

laboratorio pueden ser útiles para confirmar 

síntomas visuales, aunque los niveles foliares de 

algunos microelementos, en especial el hierro, 

pueden ser mayores en plantas sintomáticas. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

12

4.1.7A 

Figura 4.1.7 Las deficiencias de microelementos son 

particularmente difíciles de diagnosticar mediante 

síntomas foliares. Dos de los síntomas más comunes en 

plantas de coníferas, son la clorosis por deficiencia de 

hierro (A), en Pinus banksiana (jack pine) (note que las 

acículas jóvenes están cloróticas, en comparación con la 

figura 4.1.4B), y la deficiencia de cobre (B), en Picea

glauca (white spruce) (Cortesía de Ronald Hallett, 

Servicio Forestal Canadiense, Fredericton, NB). 

4.1.7B
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Volumen 4: Fertilización y Riego

13

4.1.3 Factores Físicos y Químicos que Afectan la Disponibilidad de Nutrientes

Existen varios factores que hacen que las 

relaciones nutricionales en plantas cultivadas en 

contenedor, sean diferentes a las de un bosque 

natural, o distintas a las de los árboles cultivados 

en vivero bajo el sistema de raíz desnuda. Estos 

factores deben ser considerados cuando se diseña 

un programa de fertilización, pues tienen una 

influencia significativa en la disponibilidad de 

nutrientes minerales. 

4.1.3.1 Medio de crecimiento. 

La mayor parte de las plantas de especies 

forestales producidas en contenedor, en viveros de 

Norteamérica, son cultivados en medios de 

crecimiento "artificiales" (el medio de crecimiento 

artificial, está compuesto de materiales diferentes 

al suelo). Muchas formulaciones de medios de 

crecimiento antiguos, como la composta John 

Innes, contienen una sustancial proporción de 

mantillo, el cual provee alguna fuente de nutrientes 

minerales; esta pequeña ventaja es superada, con 

mucho, por desventajas como el peso excesivo del 

suelo, y la necesidad de la pasteurización para 

eliminar organismos fitopatógenos y semillas de 

malezas. 

Las proporciones exactas pueden variar, pero la 

mayoría de los medios de crecimiento artificiales, 

están compuestos de un componente orgánico, 

usualmente turba de musgo, y de un componente 

inorgánico, como la vermiculita. El elevado 

porcentaje de turba de musgo hace que el medio 

de crecimiento quede incluido en la clase de 

sustratos orgánicos. Aunque la vermiculita 

contiene algunos elementos minerales (5 a 8% de 

K y 9 a 12% de Mg), y aunque la turba de musgo 

del género Sphagnum puede contener algún N, los 

nutrientes son liberados tan lentamente que el 

medio de crecimiento formado por turba y 

vermiculita, puede ser considerado infértil para 

efectos prácticos (Bunt, 1976). Scarratt (1986) 

analizó un sustrato de turba y vermiculita, y 

encontró muy bajos niveles para todos los 

macronutrientes (1.56 ppm de NH4-N, 1.3 ppm de 

P, 5.2 ppm de K, 1.8 ppm de Ca, y 1.2 ppm de Mg); 

el sustrato también contuvo pequeñas cantidades 

de la mayoría de los microelementos, excepto el 

Cu. 

El cambio de medios de crecimiento basados en 

suelo a los sustratos artificiales, ha producido 

algunos problemas en la nutrición de las plantas 

(Nelson, citado por Appleton, 1986): 

1. Sensibilidad al amonio.- Los medios 

artificiales, típicamente tienen valores de pH 

relativamente bajos, haciendo lenta la 

conversión bacteriana de amonio a nitrato. 

Algunas plantas sufren de toxicidad por 

amonio porque toman y almacenan 

cantidades excesivas de nitrógeno amonial; 

las plantas pueden almacenar más de 20,000 

ppm de NO3-N, en comparación con sólo unos 

cuantos cientos de partes por millón de NH4-

N. La toxicidad por amonio con frecuencia 

origina daños al sistema radical, y las plantas 

afectadas típicamente exhiben una apariencia 

marchita, hojas con textura correosa o 

enrolladas, y clorosis o necrosis de las hojas 

inferiores. Las raíces pueden tener puntos 

color anaranjado-café, con las puntas 

muertas. 

2. Lavado de fósforo.- Ya que los medios de 

crecimiento artificiales carecen de óxidos de 

hierro y aluminio, y otros productos químicos 

que fijan el fósforo en suelos naturales, este 

nutriente esencial puede ser lixiviado 

rápidamente en este tipo de sustratos, lo que 

puede acarrear deficiencia de P. 

3 Deficiencia de micronutrientes.- Los medios 

de crecimiento artificiales carecen del 

complemento de micronutrientes que se halla 

en la mayoría de los suelos naturales. 

Algunos micronutrientes, como el hierro, el 

cobre y el boro, pueden llegar a ser 

disponibles para las plantas porque pueden 

fijarse a ácidos húmicos insolubles, conforme 

el componente orgánico del medio de 

crecimiento se descompone. La deficiencia 

de hierro, es particularmente común en los 

medios de crecimiento artificiales, inclusive 

Scarratt (1986) encontró una clorosis somera 

y bajos niveles de Fe foliar en plántulas de 

Pinus banksiana (jack pine) cultivadas con la 

mayoría de los fertilizantes de propósito 

general. 

4. Bajos requerimientos de pH.- Los medios de 

crecimiento sin suelo, deberán ser mantenidos 

a bajos niveles de pH, con el propósito de 

mantener disponibles los micronutrientes (Ver 

sección 4.1.3.3). 

Tanto la turba como la vermiculita tienen 

capacidades de intercambio catiónico muy 

elevadas, lo cual significa que el medio de 

crecimiento puede mantener una reserva 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

14

nutricional de cationes, como NH4

+

, K+, Ca2+, y 

Mg2+. De la vermiculita ha sido reportado que tiene 

algún grado de capacidad de intercambio aniónico, 

y puede retener cantidades significativas de PO4

3-

(Bunt, 1976). Aunque estos iones nutrientes 

adsorbidos proporcionan un amortiguador de 

fertilidad bajo condiciones normales, también 

pueden ser removidos del medio durante un 

lixiviado fuerte, lo que permite cambios en los 

programas de fertilización, o inducción de una 

tensión nutricional, si así se desea. 

El beneficio primario de un medio de crecimiento 

infértil, por tanto, es que permite al viverista 

proporcionar los trece elementos esenciales en 

concentraciones adecuadas, y con un balance 

apropiado, y en el momento adecuado. Esto 

representa una ventaja considerable sobre el 

sistema de producción a raíz desnuda estándar, 

donde el viverista tiene que lidiar constantemente 

con las complejas y variables relaciones 

nutricionales en un suelo mineral. La habilidad 

para diseñar y aplicar un programa de fertilización 

bien balanceado, es una de las razones primarias 

que permiten lograr las rápidas tasas de 

crecimiento en las plantas, mismas que pueden ser 

alcanzadas en los viveros forestales que producen 

en contenedor (los medios de crecimiento son 

discutidos a gran detalle en el volumen dos de esta 

serie). 

4.1.3.2 Volumen del contenedor. 

Una de las consideraciones más importantes en la 

fertilización de plantas en contenedor, es el 

relativamente pequeño volumen de muchos 

contenedores para producir planta forestal. La 

mayoría de los que han sido utilizados en viveros 

forestales, varían de 40 a 492 cm3

 (2 a 30 pulgadas 

cúbicas), y esta pequeña capacidad significa que 

las plantas tienen sólo una limitada cantidad de 

reservas nutricionales. Durante la fase de 

crecimiento rápido, tanto las concentraciones de 

nutrientes como el balance entre éstos en el 

pequeño volumen del medio de crecimiento, 

pueden cambiar con rapidez. Para alcanzar tasas 

de crecimiento óptimas, los viveristas deben 

asegurarse de que el medio de crecimiento 

contenga una cantidad constante y balanceada de 

todos los nutrientes minerales esenciales (Jones, 

1983) (Otros efectos del contenedor se presentan 

en el volumen dos de esta serie). 

4.1.3.3 Relación entre el pH y la nutrición 

mineral. 

Una definición práctica de pH. El pH del medio 

de crecimiento es uno de los factores más 

comúnmente discutidos, y aún menos 

comprendidos, que afectan la nutrición mineral de 

las plantas producidas en contenedor. Una 

excelente discusión de los aspectos químicos del 

pH es dada por Tinus (1980), y la definición es lo 

suficientemente directa: una medida relativa de la 

concentración de iones hidrógeno (H+

) expresada 

en una escala logarítmica. Los valores de pH 

varían de 0 (muy ácido) a 14 (muy alcalino), con 7 

representando neutralidad. Puesto que las 

unidades de pH son logarítmicas, una solución con 

un pH de 6 tiene 10 veces más iones H+, una 

solución con un pH de 5 tiene 100 veces más iones 

H+, y una solución con un pH de 4 tiene 1 000 

veces más iones H+, que una solución con un pH 

neutro (7.0). 

En la práctica actual, el pH de una solución 

involucra más que sólo los iones H+

 u OH-; en las 

soluciones del medio de crecimiento, por ejemplo, 

el pH con frecuencia refleja la actividad de otros 

iones, notablemente del CO3

2-, HCO3-

, NH4

+

, NO3

-

, 

SO4

2-, y PO43- HPO42- y H2PO4-. Obviamente, 

muchos iones diferentes, que están presentes en 

forma natural en la fuente de agua, o que son 

agregados como fertilizante, tienen un efecto en la 

lectura de pH. Lo importante para recordar acerca 

de la nutrición de plantas producidas en 

contenedor, es que la lectura de pH es un síntoma 

y no una causa: una elevada lectura de pH indica la 

presencia de iones accesorios como CO3

2-, o 

HCO3

-

 más que el OH-. 

Efecto del pH en la disponibilidad de iones 

nutrientes. La importancia del pH en la nutrición 

de plantas producidas en contenedor, está sujeta a 

discusión. Gingrich (1984), soporta la ampliamente 

aceptada propuesta de que el pH es el " aspecto 

más importante" en la nutrición de plantas en 

contenedor, mientras que Whitcomb (1983), 

establece que el pH tiene "poco efecto" en la 

nutrición de éstas, siempre y cuando se sigan 

prácticas de fertilización adecuadas. Tinus (1980), 

menciona que el pH no puede afectar directamente 

el crecimiento de las plantas, a excepción de 

valores extremos en los que pueda ocurrir daño en 

las raíces. 

Una razón para esta diferencia de opiniones, puede 

ser atribuida al tipo de medio de crecimiento que se 

emplee; los sustratos que contienen suelo natural, 

son más afectados por el pH que aquellos que 

contienen exclusivamente medios artificiales, como 

las mezclas de turba y vermiculita. Los efectos 

negativos de los valores extremos de pH en la 

toxicidad de iones aluminio y manganeso, y en la 

disponibilidad de micronutrientes en los suelos 

minerales, está bien establecida. Sin embargo, la 

situación es diferente en suelos orgánicos. 

Estudios acerca de la disponibilidad de nutrientes 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

15

han mostrado que la disponibilidad máxima de 

éstos ocurre con un pH de 6.5, aproximadamente, 

en suelos minerales, mientras que en los suelos 

orgánicos el valor es mucho más bajo (pH de 5.0 a 

5.5) (Lucas y Davis, 1961). Peterson (1981), 

encontró que valores de 5.2 a 5.5 fueron el 

intervalo de pH óptimo para la disponibilidad de 

nutrientes en un sustrato artificial. 

Sobre una base operativa, el efecto del pH en la 

disponibilidad de nutrientes, no es tan crítica 

cuando se produce en contenedor, en comparación 

a cuando se cultiva a raíz desnuda. Los suelos 

naturales contienen una variedad de iones 

químicos que reaccionan con los iones 

nutricionales, especialmente los microelementos, y 

los hacen no disponibles para las plantas. No 

obstante, este no es el caso de los sustratos 

artificiales, a causa de su inherente bajo nivel de 

nutrientes (Whitcomb, 1983). Siempre que se 

aplique regularmente una fertilización bien 

balanceada, los efectos del pH en la disponibilidad 

de nutrientes no deberán ser motivo de 

preocupación. Whitcomb (1984), reporta que aún 

las plantas sensibles al pH, como la azalea, 

pueden ser cultivadas en medios artificiales, con 

pH de 3.0 a 8.2, siempre que se adicionen los 

nutrientes adecuados. 

El pH óptimo para el cultivo de especies 

forestales. Aunque las especies forestales son 

capaces de tolerar un intervalo relativamente 

amplio de valores de pH, está bien documentado 

que las coníferas crecen mejor con un pH 

alrededor de 5.5, mientras que las latifoliadas 

prefieren un valor ligeramente mayor de 6.5. Es 

recomendable mantener la solución del medio de 

crecimiento dentro de un intervalo de media unidad 

de pH hacia arriba y hacia abajo de estos valores 

objetivo recomendados. El control del pH en el 

agua de riego y en la solución del medio de 

crecimiento, es discutido en la sección 4.1.7.2. 

4.1.3.4 Contenido de humedad en el medio de 

crecimiento. 

Puesto que los iones nutrientes están disueltos en 

la solución acuosa que rodea las partículas del 

medio de crecimiento, el contenido de humedad del 

sustrato afecta tanto la disponibilidad como la 

absorción de nutrientes. Por tanto, la fertilización 

es altamente dependiente de las prácticas de riego 

en el vivero, y un bajo contenido de humedad 

reduce drásticamente la efectividad de la 

fertilización. Squire et al. (1987), encontraron que 

la fertilización con N y P sólo influenció el 

crecimiento de plantas de Pinus radiata (Monterey 

pine) con niveles relativamente elevados de 

humedad (0.00 a -0.10 MPa). Aún dentro de este 

intervalo, el peso anhidro de la planta se reduce 

radicalmente al aumentar la tensión hídrica (fig. 

4.1.8). Las implicaciones de estos hallazgos 

deberían ser obvios: el contenido de humedad del 

medio de crecimiento deberá ser mantenido a 

niveles óptimos para conseguir una efectividad 

máxima. 

4.1.3.5 Salinidad de la solución del medio de 

crecimiento. 

La fuente principal de sales solubles en los viveros, 

son los residuos de fertilizante, el agua de riego y 

el medio de crecimiento (Roshler y Wright, 1984). 

Los fertilizantes inorgánicos son considerados 

químicamente como sales, y las sales solubles 

también son introducidas con el agua de riego. 

El medio de crecimiento típico a base de turba y 

vermiculita no contribuye apreciablemente al 

problema de las sales solubles, aunque los grados 

bajos de la turba de musgo pueden liberar sales 

durante la descomposición. Los contenedores de 

volúmenes pequeños también afectan la salinidad 

de la solución que rodea las partículas del medio 

de crecimiento. La salinidad aumentará conforme 

la planta tome sales del fertilizante, o conforme las 

sales sean lixiviadas del sustrato durante el riego. 

La salinidad, también puede alcanzar niveles 

dañinos bajo condiciones de elevada

evapotranspiración, si el medio de crecimiento se

deja secar (Furuta, 1978). 

Figura 4.1.8 El efecto benéfico de la fertilización con 

nitrógeno (N), disminuye al incrementar la tensión hídrica 

en el medio de crecimiento (de Squire et al., 1987). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

16

Aunque las sales solubles pueden afectar a las 

plantas en varias formas, los elevados niveles de 

unos iones específicos, pueden afectar 

adversamente la absorción de ciertos nutrientes, y 

alterar el balance nutricional que es requerido para 

el óptimo crecimiento. La interacción de iones 

nutrientes incluye competencia, antagonismo, y 

sinergismo, y estas propiedades son discutidas con 

detalle en la sección 4.1.5.2. Los efectos de la 

salinidad en el crecimiento de las plantas son 

referidos en la sección 4.1.9.1, y en Rohsler y 

Wright (1984) (para los aspectos relacionados con 

la salinidad del agua de riego, ver la sección 

4.2.4.2). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

17

4.1.4 Características de los Fertilizantes 

Los fertilizantes pueden ser categorizados en 

varias formas, pero para propósitos prácticos se 

consideran tres tipos: fertilizantes con 

macronutrientes, que proporcionan N, P y K; 

fertilizantes de nutrientes secundarios, que 

proporcionan Ca, Mg y S; y fertilizantes que 

proporcionan microelementos, ya sea alguno o una 

combinación de los siete micronutrientes 

esenciales. Sanderson (1987), puntualiza las 

siguientes características de los fertilizantes con 

macronutrientes; los fertilizantes con nutrientes 

secundarios se discuten en la sección 4.1.4.2, y los 

fertilizantes con micronutrientes, son discutidos en 

la sección 4.1.4.3. 

4.1.4.1 Fertilizantes con macronutrientes. 

Forma. Tanto las formas líquidas como las sólidas 

de fertilizantes, son usadas en este tipo de viveros; 

los fertilizantes sólidos pueden ser adquiridos en 

forma granular o de pastillas. Los fertilizantes 

líquidos generalmente son inyectados a través del 

sistema de riego, mientras que los fertilizantes 

sólidos son incorporados al sustrato, o usados, 

previa disolución a manera de cubierta (ver sección 

4.1.6 para más información relacionada con las 

técnicas de aplicación). 

Grado o análisis. Los fabricantes de fertilizante, 

por ley, deben garantizar el contenido de nutrientes 

de los tres macroelementos primarios (N-P-K) en el 

envase del fertilizante: el N se especifica como 

porcentaje, pero el P y el K son especificados como 

la forma óxida del elemento, el P como porciento 

de P2O5, y el K como porcentaje de K2O. Por 

ejemplo, un fertilizante 20-20-20 contendrá 20% de 

N, 20% de P2O5 (8.8% de P), y 20% de K2O (16.6% 

de K) (Los factores de conversión son enlistados 

en el cuadro 4.1.4). Los fertilizantes de grado alto 

se refieren a la cantidad total de nutrientes 

minerales en el fertilizante; para el ejemplo del 

fertilizante 20-20-20, el análisis total sería de 

45.4%. El resto del contenido está compuesto de 

productos químicos accesorios que no son 

nutrientes, aunque algunos fertilizantes con 

frecuencia contienen otros nutrientes secundarios 

no especificados, incluyendo Ca y S. Los 

fertilizantes de alto grado, son el único tipo que 

generalmente es empleado en viveros forestales 

que producen en contenedor, especialmente para 

inyección líquida, pues los grados bajos contienen 

una cantidad inaceptable de material inerte, que 

puede causar problemas de solubilidad en las 

soluciones de nutrientes. Las proporciones 

relativas de N-P-K determinan la conveniencia de 

un fertilizante para determinadas especies, o 

etapas de crecimiento (ver sección 4.1.5.3). 

Cuadro 4.1.4 Factores de conversión para cálculos con 

fertilizantes comerciales. 

Para cambiar 

de A 

a B Multiplicar A 

por 

P2O5 P 0.4364 

P P2O5 2.2910 

K2O K 0.8301 

K K2O 1.2050 

Figura 4.1.9 La proporción relativa de iones nitrato (NO3

-

) y amonio (NH4

+

), puede tener un efecto significativo en 

el pH de la solución del medio de crecimiento (de 

Trelease y Trelease, 1935). 

Fuente de nitrógeno. El nitrógeno es, con mucho, 

el nutriente mineral individual más importante en un 

programa de fertilización, puesto que es el que más 

frecuentemente limita el crecimiento de las plantas 

producidas en contenedor. El N está disponible en 

muchas formas, orgánicas e inorgánicas. Las 

formas orgánicas de N, rara vez son usadas en 

estos viveros, a causa de su variable tasa de 

liberación, bajo análisis de nutrientes y costo 

relativamente elevado (Sanderson, 1987), pero 

están disponibles muchas fuentes inorgánicas de 

N. Hay dos iones N inorgánicos que son 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

18

absorbidos por las plantas: el amonio, un catión 

(NH4

+

) cargado positivamente, y el nitrato, un anión 

(NO3

-

) cargado negativamente. 

El tipo de N tiene un efecto en la disponibilidad, en 

la posible toxicidad de nutrientes, y en el pH del 

sustrato (fig. 4.1.9). Los viveristas deberán verificar 

el análisis en el envase del fertilizante, para 

determinar cuál forma de N es la más abundante. 

Algunos fertilizantes contienen sólo NO3

-

, como el 

nitrato de calcio, mientras que otros están 

compuestos exclusivamente de NH4

+

 (fosfato de 

amonio). El nitrato de amonio contiene iguales 

cantidades de ambos iones de nitrógeno. La urea 

[(NH2)2CO] es una forma de nitrógeno ampliamente 

usada, y comúnmente es empleada para formular 

fertilizantes de alto grado para plantas de especies 

forestales cultivadas en contenedor. La urea es 

descompuesta por microbios en NH4

+

, y luego a 

NO3

-

 en el medio de crecimiento. Estas reacciones 

son sensibles a la temperatura, además, los 

sustratos artificiales, basados en turba, muy 

utilizados en la mayoría de estos viveros, pueden 

no contener el número apropiado o el tipo 

adecuado de microorganismos para realizar las 

conversiones anteriores. Scarrat (1986), estimó 

que la nitrificación del NH4

+

 puede ser inhibida bajo 

condiciones de poca luz y medio de crecimiento 

húmedo, los cuales frecuentemente ocurren 

durante el cultivo en la época invernal. El ethazol 

(Truban®), un fungicida de uso común, también 

inhibe el crecimiento de estos microorganismos. 

Bajo las elevadas temperaturas que usualmente 

acontecen en los invernaderos durante el verano, 

la conversión a nitrato puede ocurrir muy 

rápidamente, y las frías temperaturas del suelo en 

invierno pueden causar niveles tóxicos de NH4

+

. 

Ciertas especies de plantas son dañadas por 

elevados niveles de amonio o de nitrato 

(Sanderson, 1987). 

Tasa de liberación de nutrientes. La tasa a la 

cual los nutrientes son liberados por el fertilizante, 

también es importante. Muchos de los fertilizantes 

de alto grado utilizados para fertilizantes líquidos, 

son altamente solubles en agua, y por tanto los 

iones son liberados con rapidez. Otros fertilizantes, 

como los empleados para incorporación en 

sustrato, son formulados especialmente para 

liberar sus nutrientes a través del tiempo. La tasa 

de liberación de nutrientes está afectada por la 

formulación del fertilizante, por la temperatura, por 

la humedad, y por la actividad microbiológica (ver 

la sección 4.1.6.1 para una discusión más amplia 

acerca de los fertilizantes de liberación lenta, y la 

sección 4.1.6.2 para los fertilizantes de liberación 

rápida). 

Efecto de las propiedades químicas del medio 

de crecimiento. El tipo de fertilizante puede 

afectar el pH y los niveles de sales solubles del 

medio de crecimiento, lo cual puede afectar 

seriamente el crecimiento de la planta. Ciertas 

especies son sensibles al pH, y los niveles 

elevados de sales solubles pueden originar la 

denominada "quemadura por fertilizantes", la cual 

es particularmente seria con las semillas en 

germinación y con las plántulas pequeñas. 

Los fertilizantes pueden ser clasificados de acuerdo 

con un índice relativo de sales (cuadro 4.1.5), el 

cual es una medida de la potencialidad del 

fertilizante para producir sales solubles en la 

solución del medio de crecimiento, y de la 

potencialidad para causar daños (Roshler y Wright, 

1984). Los viveristas deberán elegir fertilizantes 

que puedan proporcionar los nutrientes deseados 

con los más bajos índices relativos de sales, por 

ejemplo, para proporcionar N, el nitrato de calcio 

(índice de sales = 53), podría ser potencialmente 

menos dañino que el nitrato de sodio (índice de 

sales = 100). También el nitrato de calcio 

proporciona dos nutrientes minerales distintos (Ca 

y N), mientras que el nitrato de sodio, junto con el 

N, contribuye potencialmente a fortalecer los iones 

de sodio (Na) en la solución del medio de 

crecimiento. 

Cuadro 4.1.5 Índices relativos de sales para varios 

fertilizantes. 

Fertilizante Índice relativo de 

sales1

Nitrato de sodio 100 

Cloruro de potasio 116 

Nitrato de amonio 105 

Urea 75 

Nitrato de potasio 74 

Sulfato de amonio 69 

Nitrato de calcio 53 

Sulfato de potasio 46 

Sulfato de magnesio 44 

Fosfato diamonio 34 

Superfosfato concentrado 10 

Superfosfato ordinario 8 

Yeso 8 

Caliza 5 1

 Relativo a nitrato de sodio, el cual tiene un valor de 100. 

Fuente: modificado de Roshler y Wright (1984). 

El efecto de un fertilizante sobre el pH está 

especificado en la etiqueta del mismo como "acidez 

potencial", la cual representa la cantidad de 

carbonato de calcio requerida para neutralizar una 

tonelada de fertilizante. La acidez potencial es de 

utilidad al elegir un fertilizante para un cultivo 

determinado, o para ajustar el pH del medio de 

crecimiento durante la etapa de cultivo (fig. 4.1.9). 

Aún los fertilizantes de lenta liberación pueden 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

19

afectar el pH del sustrato. Sanderson (1987), 

reporta que el Osmocote® 14-14-14, produce una 

reacción más ácida que el Pro-Grow® 25-10-10, 

probablemente como resultado de la fuente de 

nitrógeno. Los fertilizantes basados en amonio, 

como el nitrato de amonio, el sulfato de amonio, y 

el fosfato de amonio, generalmente son promotores 

de acidez, mientras que los fertilizantes basados en 

nitrato, como el nitrato de calcio, o el nitrato de 

potasio, incrementan el pH del medio de 

crecimiento. Por otra parte, generalmente la urea 

no afecta el pH en los suelos, pero en una solución 

lentamente hidrolizará e incrementará el pH. 

La mayoría de los fertilizantes inorgánicos, 

especialmente los fertilizantes de alto grado usados 

para la fertilización líquida en los viveros forestales 

que producen en contenedor, son considerados 

sales desde el punto de vista químico (por ejemplo, 

el nitrato de calcio libera dos iones nutrientes: Ca2+

y NO3

-

). El uso indiscriminado de cualquier 

fertilizante que produzca sales puede causar daños 

por sales. (Ver sección 4.1.9.1 en relación a los 

procedimientos para la revisión de sales solubles 

en los viveros, y la sección 4.2.4.2 para una mayor 

discusión acerca de los efectos de la salinidad). 

Los fertilizantes de liberación lenta producen una 

menor salinidad que los fertilizantes estándar pues, 

por definición, los primeros liberan iones dentro de 

la solución del medio de crecimiento. El tipo de N 

utilizado para formular los fertilizantes de liberación 

lenta también puede afectar la salinidad del medio 

de crecimiento. Sanderson (1987), refiere que el 

Pro-Grow® 25-10-10, con su base de ureaformaldehido, produce menos salinidad que el 

Osmocote® 14-14-14, el cual está compuesto de 

fuentes de nitrógeno inorgánico. 

Eficiencia en el uso por la planta. Ha sido 

estimado que las plantas usan solamente un 

décimo de los nutrientes aplicados durante una 

fertilización líquida típica (Furuta, citado por 

Sanderson, 1987). Cuando se aplica fertilizante 

líquido, siempre se debe mantener algún nivel 

excesivo de éste en la solución del medio de 

crecimiento. Por otra parte, los fertilizantes de 

liberación lenta proporcionan nutrientes a una tasa 

más compatible con la tasa a la cual son 

absorbidos por las plantas. Whitcomb (1984), 

establece que tan pronto como los nutrientes son 

liberados de los fertilizantes de liberación lenta, 

éstos son usados por la planta. Esto significa que 

las mediciones de salinidad (conductividad 

eléctrica) de la solución del medio de crecimiento, 

pueden parecer anormalmente bajas. 

Sanderson (1987), estima que las plantas pierden 

diez veces más nutrientes de los fertilizantes 

solubles en agua, que de los fertilizantes de 

liberación lenta. Esto no es sólo un desperdicio, 

además la elevada lixiviación de los fertilizantes 

solubles contribuye a la contaminación del agua 

residual. (Ver sección 4.2.8 para una discusión 

referente a la disposición del agua residual). 

Costo. Las diferencias de costo entre fertilizantes 

pueden ser aducidas al análisis, al tipo y fuente de 

materiales de que consta, a los costos de 

fabricación, al transporte, a la cantidad comprada, y 

a otros factores. (Para una comparación de los 

costos de nitrato de amonio de varios grados 

químicos, ver la sección 4.1.7.4). Los nutrientes 

individuales también varían en costo, con el N 

siendo el menos caro, y las fuentes de fósforo 

solubles en agua las más caras. Debido a que el 

superfosfato (0-46-0) es una de las formas más 

baratas de P, muchos viveristas tratan de ahorrar 

dinero mediante la incorporación de este fertilizante 

dentro del medio de crecimiento (Sanderson, 

1987). Es más práctico proporcionar P en la forma 

de ácido fosfórico (H3PO4), el cual primariamente 

es utilizado para disminuir el pH del agua de riego 

(fig. 4.1.10). Muchos viveros forestales que 

producen en contenedor, abastecen todos sus 

requerimientos de fertilizante con P mediante el 

uso de esta última técnica. 

Figura 4.1.10 El ácido fosfórico puede ser una práctica y 

económica fuente de fósforo cuando también es 

empleado para acidificar el agua de riego. 

En la actualidad, el costo del fertilizante en sí 

mismo, puede ser relativamente menor, en 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

20

comparación al costo del trabajo involucrado al 

hacer la mezcla y en la aplicación (Sanderson, 

1987). Una de las ventajas reales de usar 

fertilizantes incorporados al sustrato, es el ahorro 

en trabajo, pues el aplicar fertilizantes líquidos dos 

veces por semana o incluso diariamente, 

representa más trabajo y mayores costos. 

Después de considerar todos estos factores, la 

elección del mejor fertilizante puede parecer una 

decisión difícil y complicada. Por el contrario, la 

decisión de qué fertilizante usar, deberá 

fundamentarse en un criterio solamente: la 

respuesta de crecimiento de la planta bajo las 

condiciones actuales de cultivo y las ambientales. 

4.1.4.2 Fertilizantes con nutrientes secundarios. 

Los macronutrientes secundarios (Ca, Mg y S), 

generalmente son proporcionados por el suelo y el 

agua, y por tanto no son agregados como 

fertilizante en los viveros que producen a raíz 

desnuda. Con frecuencia son proporcionadas las 

cantidades adecuadas de Ca y Mg con el agua de 

riego, especialmente en áreas donde el agua es 

"dura". El Ca es obtenido de la caliza cálcica, y el 

Ca y el Mg de la caliza dolomítica; estos dos 

materiales comúnmente son utilizados para 

aumentar el pH de suelos ácidos, o el de la turba 

de musgo, en el caso de los viveros que producen 

en contenedor. El azufre es proporcionado en 

cantidades relativamente pequeñas a través de la 

descomposición de la materia orgánica, el agua de 

río, el agua de lluvia, y de muchos plaguicidas 

(California Fertilizer Association, 1985). 

Los nutrientes secundarios también están 

presentes en muchos productos químicos usados 

como fertilizantes, y en las formulaciones de 

fertilizantes comerciales. El sulfato de amonio, 

(NH4)2SO4, contiene S y el nitrato de calcio, 

Ca(NO3)2, contiene Ca. (Para una mayor discusión 

acerca del contenido de nutrientes secundarios en 

los principales productos químicos utilizados para 

la formulación de fertilizantes líquidos comunes, ver 

la sección 4.1.7.4, y para el contenido de nutrientes 

secundarios en un fertilizante comercial típico, ver 

la sección 4.1.7.3). 

4.1.4.3 Fertilizantes con micronutrientes. 

En los viveros que producen a raíz desnuda, las 

plantas pueden obtener los micronutrientes del 

suelo, y la fertilización con microelementos no se 

aplica a menos que se tenga carencia específica 

de éstos, como acontece cuando se tiene un pH 

elevado, o altos niveles de calcio. La fertilización 

con micronutrientes es definitivamente necesaria 

en los sustratos artificiales que se usan 

comúnmente en los viveros que producen en 

contenedor (ver sección 4.1.3.1). El balance de los 

diferentes micronutrientes en el sustrato, también 

es considerado crítico, pues los niveles elevados 

de alguno de éstos pueden interferir con la 

disponibilidad de algún otro (fig. 4.1.11). 

Deficiencia observada Causa de la deficiencia: 

Desbalances en nutrientes minerales 

S Ca Mg Mn Fe B Cu Zn Mo 

z z z z z Nitrógeno elevado 

 z z z z Fósforo elevado 

 z Potasio bajo 

z Calcio bajo 

 z z z Calcio elevado 

 z Magnesio elevado 

 z z Manganeso elevado 

 z z Fierro elevado 

 z z z Cobre elevado 

 z Zinc bajo 

 z z z Zinc elevado 

z z z z pH bajo 

 z z z z z z pH elevado 

 z Azufre elevado 

z z z Sodio elevado 

 z Bicarbonatos elevados 

z Desbalance en relación Hierro:Cobre:Magnesio 

Figura 4.1.11 Pueden ocurrir muchas interacciones químicas diferentes en la solución del medio de crecimiento. La 

disponibilidad de nutrientes puede ser reducida por niveles excesivamente altos de otro nutriente, y otra condición química, 

como sería un elevado pH. Los micronutrientes son especialmente sensibles a problemas de desbalances (Modificado de 

Stoller Chemical Company's Product Manual and Nutrient Deficiency Guide).
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

21

Los micronutrientes pueden ser aportados tanto de 

fuentes inorgánicas como de fuentes orgánicas, y 

las propiedades de las diferentes fuentes varían 

considerablemente. La Asociación Californiana de 

Fertilizantes (California Fertilizer Association, 

1985), clasifica los micronutrientes como: 1) sales 

inorgánicas, 2) quelatos sintéticos, y 3) complejos 

naturales orgánicos. Los complejos orgánicos 

naturales son subproductos de la industria de la 

celulosa, pero no son recomendados para el cultivo 

de especies forestales en contenedor, pues son 

menos estables que los quelatos sintéticos, y son 

descompuestos más rápidamente por los 

microorganismos. 

Sales inorgánicas. Los fertilizantes inorgánicos 

más comunes con micronutrientes, son los sulfatos 

de los microelementos metales (Fe, Mn, Cu y Zn); 

otras formas de óxidos y cloruros de los 

micronutrientes metales, también están 

disponibles, pero generalmente son preferidas las 

formas sulfato. La fuente principal de formas de B 

solubles en agua, incluye tetraborato de sodio 

(borax), y Solubor ®, mientras que el molibdato de 

sodio, y el molibdato de amonio son las principales 

formas de fertilizante con Mo (California Fertilizer 

Association, 1985). (Se puede encontrar una 

discusión acerca de los fertilizantes comerciales 

con micronutrientes en la sección 4.1.6.1; una lista 

de los principales productos químicos fertilizantes 

usados en la formulación de fertilizantes líquidos 

comunes, se encuentra en la sección 4.1.7.4; en 

relación al contenido de micronutrientes de un 

fertilizante comercial "completo", ver la sección 

4.1.7.3). 

Quelatos sintéticos. Un agente quelatante es un 

compuesto, usualmente orgánico, que se puede 

combinar químicamente con un ion metálico, 

formando una estructura similar a un anillo (fig. 

4.1.12). La molécula resultante es denominada 

quelato. Los quelatos son empleados 

frecuentemente para proteger los micronutrientes 

metales de la inactivación química que tan 

frecuentemente ocurre en los suelos alcalinos. Los 

fertilizantes con micronutrientes, pueden contener 

varios tipos de agentes quelatantes distintos, pero 

la estabilidad de estos compuestos es variable. La 

estabilidad de los quelatos varía en función del ion 

metal y del agente quelatante. Los agentes 

micronutrientes quelatantes comúnmente usados 

en los viveros, con sus nombres químicos 

reconocidos son: 

EDTA = ácido etilendiaminotetraacético 

EDDHA = ácido etilendiaminodihidroxifenilacético 

HEDTA = ácido hidroxietiletilenodiaminotriacético 

Obviamente, la química de los fertilizantes quelatos 

sintéticos es muy complicada, y para mayor 

información se recomienda leer a Mortvedt et al. 

(1972). 

Los fertilizantes con micronutrientes quelatados, 

están disponibles para nutrientes simples, o en 

mezclas especialmente preparadas (los fertilizantes 

con micronutrientes son discutidos en la sección 

4.1.6.1; una lista de los micronutrientes quelatos 

más comunes, empleados para formular 

fertilizantes líquidos, se presenta en la sección 

4.1.7.4) 

Figura 4.1.12 Los fertilizantes con micronutrientes quelatados, están compuestos por un complejo orgánico cargado 

negativamente, y un catión, en este caso (A) un catión manganeso (Mn). Los micronutrientes quelatados, resisten la 

irrupción de nutrientes de otros productos químicos en la solución del medio de crecimiento, en este ejemplo (B), un ion 

hidróxido (OH). El Mn no quelatado, precipitará en la solución como Mn(OH)2 (Modificado de Stoller Chemical Company's 

Product Manual and Nutrient Deficiency Guide). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

22

4.1.5 Determinando las Necesidades de Fertilizante 

Un programa de fertilización para un vivero forestal 

que produce en contenedores, deberá diseñarse 

para mantener concentraciones específicas de los 

diferentes micronutrientes minerales en el medio de 

crecimiento, manteniéndolos en balance, y también 

deberá ser diseñado para permitir los necesarios 

cambios nutricionales durante el ciclo de cultivo. 

4.1.5.1 Concentración de nutrientes. 

La concentración de cada nutriente mineral en la 

solución del medio de crecimiento, es el aspecto 

más importante de la fertilización en vivero. Una 

concentración muy baja reducirá el crecimiento de 

las plantas, además, las plantas suculentas que 

son cultivadas en contenedores pueden ser 

dañadas fácilmente por los elevados niveles de 

sales, a su vez originados por las elevadas 

concentraciones de nutrientes. Los altos niveles de 

ciertos nutrientes, especialmente N, también 

pueden afectar la calidad de la planta (ver sección 

4.1.10). 

Unidades. Las concentraciones de nutrientes 

minerales pueden ser descritas en muy variadas 

formas (cuadro 4.1.6). Las partes proporcionales 

[partes por millón (ppm)], son más útiles para 

describir y comparar regímenes nutricionales, 

mientras que las unidades de peso o volumen 

[miligramos por litro (mg/l) o las onzas por galón 

(oz/gal)] son necesarias para los cálculos de 

fertilización. Las partes por millón se refieren a la 

concentración de un material, sin referir unidades 

específicas de peso o volumen (Bonaminio, 1983). 

Para describir la actividad química, los 

miliequivalentes (meq) o Milimoles (mmol) por litro, 

son más precisos. La conversión entre partes por 

millón y miligramos por litro, es muy fácil para 

soluciones acuosas: 1 ppm = 1 mg/l, puesto que 1 

litro de agua pesa 1 kg (1 mg/kg = 1 ppm). 

Cuadro 4.1.6 Unidades de medición en la fertilización. 

Clase Unidad Abreviatura

Proporcional partes por millón ppm* 

Peso por volumen miligramos por 

litro 

mg/l* 

Peso por volumen onzas por galón oz/gal 

Peso ajustado para 

carga iónica por 

volumen 

miliequivalentes 

por litro 

meq/l 

Peso molecular 

miligramo por 

volumen 

milimoles por litro mmol/l 

* En soluciones acuosas, 1 ppm = 1 mg/l . 

Aunque las partes por millón son las unidades más 

utilizadas para calcular las tasas de aplicación de 

fertilizantes líquidos, muchos viveristas prefieren 

usar el peso de un bulto de fertilizante para cierta 

cantidad de agua. Aunque no es preciso desde un 

punto de vista científico, muchos viveristas 

emplean la regla en la que 28.4 g (1 onza) de 

fertilizante disuelto en 378.5 litros (100 galones) de 

agua, equivale a 75 ppm. Por ejemplo, si usted 

desea obtener 225 ppm de N en la solución de 

fertilizante que aplicará, agregue 85.2 g (3 onzas) 

de N o 426.5 g (15 onzas) de un bulto de 

fertilizante con la fórmula 20-20-20, a 378.5 litros 

(100 galones) de agua (Bonaminio, 1983). (En la 

sección 4.1.7.3, se proporciona una tabla para 

determinar la cantidad de fertilizante en volumen a 

agregar por cada volumen estándar de solución de 

fertilizante). 

Nivel de nitrógeno. El N es uno de los nutrientes 

más importantes que afectan el crecimiento de las 

plantas, y el elemento que con más frecuencia es 

aplicado. Muchos programas de fertilización están 

basados en la concentración de N, y los niveles de 

todos los otros nutrientes generalmente son 

establecidos en relación al N. El mejor nivel de N 

para el crecimiento de las plantas ha sido fuente de 

mucha discusión entre especialistas de viveros, y 

los niveles prescritos en la literatura muestran una 

variación considerable (cuadro 4.1.7). Se han 

utilizado comúnmente niveles elevados de N, 

alrededor de 200 ppm o más, probablemente 

porque mucho del trabajo inicial está fundamentado 

en regímenes de fertilización para especies 

hortícolas. Otra razón de los elevados niveles de N 

reportados en la literatura, es que muchas 

recomendaciones corresponden a aplicaciones 

periódicas de fertilizantes, y por tanto son más 

altas que en el caso de la fertilización continua (ver 

sección 4.1.8.3). La Encuesta aplicada a Viveros 

que Producen en Contenedor, reveló que los 

viveros norteamericanos emplean niveles de N de 

entre 55 a 260 ppm para el periodo de más rápido 

crecimiento de la planta (fase de crecimiento 

rápido, cuadro 4.1.7). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

23

Cuadro 4.1.7 Comparación de las tasas de aplicación de fertilizante recomendadas durante las tres fases de 

cultivo en especies forestales. 

Concentración (ppm) 

Fuente Fase de 

establecimiento 

Fase de 

crecimiento rápido 

Fase de 

endurecimiento 

Mullin y Hallett (1983), Carlson (1983) 50 100 25 

Pinus spp. 229 229 45 

Picea spp. 112 112 45 

Pseudotsuga menziesii del interior 62 100 62 

Tinus y McDonald (1979) -- 223 20 

Peters Bulletin PTB-114 75-100 100-150 25-50 

Container Tree Nursery 

Survey (1984) 12-125 55-260 0-141 

Ingestad (1979) 

Pinus sylvestris -- 20 - 50 -- 

Picea abies -- 60 - 100 -- 

Morrison (1974) -- 50 - 300 -- 

Brix y van den Driessche (1974) -- 28 - 300 -- 

Sin embargo, en años recientes, se ha desarrollado 

más investigación acerca de la nutrición de 

especies forestales, y las recomendaciones más 

recientes se refieren a bajas concentraciones de N 

durante la fase de crecimiento rápido. Ingestad 

(1979), recomienda concentraciones de N de 20 a 

50 ppm para Pinus sylvestris (Scotch pine), y de 

60 a 100 ppm para Picea abies (Norway spruce), 

siempre y cuando el resto de los nutrientes se 

aportado en proporciones adecuadas. Phillion y 

Libby (1984), cultivaron plántulas de Picea (spruce) 

a concentraciones de N de 12 a 500 ppm, y 

concluyeron que la mejor concentración fue 100 

ppm, en términos de color y crecimiento de la 

planta. Trabajando con Pinus banksiana (jack 

pine) en contenedores, Scarratt encontró que la 

fertilización constante, con 100 ppm de N produce 

excelentes tasas de crecimiento, y que tasas más 

elevadas de N reducen la calidad de la planta. La 

tendencia general ha sido reducir los niveles totales 

de N de 200 hasta alrededor de 100 o 150 ppm 

durante la fase de crecimiento rápido, para 

controlar el crecimiento de la parte aérea y para 

producir una planta más balanceada. Los niveles 

óptimos en relación a nutrientes para especies 

forestales producidas en contenedor (cuadro 4.1.8), 

necesitarán ajustarse para cada especie conforme 

se cuente con más investigación. (En la sección 

4.1.10 está una discusión sobre los efectos del uso 

de fertilización intensa). 

Cuadro 4.1.8 Niveles óptimos para los 13 elementos 

esenciales en soluciones de fertilizante líquido, y para 

fertilización constante de especies forestales. 

Dosis óptima de aplicación (ppm) 

Nutriente 

mineral 

Fase de 

establecimiento 

Fase de 

crecimiento 

rápido 

Fase de 

endurecimiento

Macronutrientes 

N* 50 150 50 

P 100 60 60 

K 100 150 150 

Ca 80 80 80 

Mg 40 40 40 

S 60 60 60 

Micronutrientes (igual para todas las fases de 

crecimiento)

Fe 4.00 4.00 4.00 

Mn 0.80 0.80 0.80 

Zn 0.32 0.32 0.32 

Cu 0.15 0.15 0.15 

Mg 0.02 0.02 0.02 

B 0.50 0.50 0.50 

Cl+ 4.00 4.00 4.00 

*Los niveles de N son muy dependientes de la especie. 

Algunas especies sensibles al N, como son Larix 

occidentalis (western larch) y Populus (quaking aspen), 

requieren de niveles bajos, mientras que especies de lento 

crecimiento como Picea (spruce) y Abies (true firs), 

requieren elevados niveles de N. 

+Pequeñas cantidades de Cl están presentes en muchas 

fuentes de agua de riego, y el Cl es un contaminante en 

muchos fertilizantes; así que el Cl adicional casi nunca es 

requerido. 

Fuente: modificado de Tinus y McDonald (1979).
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

24

4.1.5.2 Balance nutricional. 

La proporción relativa de los diferentes nutrientes 

minerales entre sí, en la solución del medio de 

crecimiento, es el siguiente factor a considerar 

cuando se diseña un programa de fertilización para 

un vivero forestal que produce en contenedor. 

Jones (1983) establece que las proporciones de 

concentración son más importantes que la 

concentración absoluta de cualquier elemento. El 

balance entre los diferentes nutrientes minerales, 

es importante desde la óptica biológica por dos 

razones: 

1. El exceso de ciertos iones en la solución del 

medio de crecimiento, puede afectar la 

absorción y utilización de otros nutrientes 

(figura 4.1.11). 

2. El balance iónico afecta el pH de la solución del 

medio de crecimiento. 

Una característica de la absorción activa de 

nutrientes (ver sección 4.1.2.1), es que la absorción 

de iones de la solución del medio de crecimiento 

involucra competencia, antagonismo y sinergismo 

entre iones. Los iones monovalentes, como el 

potasio (K+

), son absorbidos más rápidamente que 

los iones di o trivalentes. Si la forma principal del 

nitrógeno en la solución del medio de crecimiento 

es el nitrato (NO3

-

), entonces ciertos cationes (K+, 

Ca2+, y Mg2+) son absorbidos en grandes 

cantidades, en comparación a cuando el amonio 

(NH4

+

) está presente. Se ha demostrado que la 

presencia de NH4

+

 incrementa la absorción de NO3

-

, mientras que la presencia de iones Cl- inhibe la 

absorción de NO3

-

 (Jones, 1983). 

Steiner (1980), establece que la mayoría de las 

plantas crecerán mejor en una solución universal 

de nutrientes, siempre y cuando se respete cierta 

proporción entre cationes y aniones (cuadro 4.1.9). 

Dicho autor ha diseñado una "solución nutritiva 

universal" que está fundamentada en las 

proporciones relativas de cationes y aniones, 

concentración iónica total, y pH (Jones, 1983). Una 

de las teorías de balance nutricional más 

ampliamente usadas en el cultivo de especies 

forestales, está basada en el trabajo de Ingestad, 

quien establece las proporciones de todos los otros 

nutrientes en relación al N. Ingestad (1979), 

propuso "proporciones de nutrientes" para 

diferentes especies de coníferas y de latifoliadas; 

las proporciones para Pseudotsuga menziesii 

(Douglas fir) están referidas en el cuadro 4.1.10, 

junto con las concentraciones para los 13 

elementos esenciales a 100 y 200 ppm de N. 

La proporción entre los iones nitrato (NO3

-

) y 

amonio (NH4

+

) ha sido investigada, y los 

investigadores han encontrado que la 

concentración total de estos dos iones no fue tan 

importante como su balance relativo. El 

crecimiento de las plantas fue reducido si 

cualquiera, el NO3

-

 o el NH4

+

, fue usado como 

fuente exclusiva de N. van den Driessche (1978), 

encontró que las proporciones iguales de ambos 

iones de N resultaban en el mayor crecimiento de 

las plantas, con un pH de 5.5, aunque el 

crecimiento de la raíz pudiera ser mayor con 

elevados niveles de NO3

-

. La proporción relativa de 

NH4

+

 y NO3

-

 en la solución del medio de 

crecimiento, también es importante, y esos dos 

iones tienen una influencia significativa en el pH de 

la solución (ver fig. 4.1.9). Los sistemas radicales 

de las plantas pueden dañarse con elevados 

niveles de NH4

+

 en los sustratos artificiales, y 

Nelson (citado por Appleton, 1986) recomienda que 

los viveristas usen fertilizantes con menos de 40 o 

50% de nitrógeno amoniacal. 

Cuadro 4.1.9 Recomendaciones de concentraciones de 

iones en la "solución nutritiva universal". 

Proporciones de iones esenciales 

Porcentaje de aniones totales 

Nitrato (NO3

-

) 50-70% 

Fosfato (H2PO4

-

) 3-20% 

Sulfato (SO4

2-) 25-45% 

Porcentaje de cationes totales 

Potasio (K+) 30-40% 

Calcio (Ca2+) 35-55% 

Magnesio (Mg2+) 15-30% 

Proporciones específicas de iones 

NO3

-

:H2PO4

-

:SO4

2 60:5:35 

K+ : Ca2+ : Mg2+ 35:45:20 

Fuente: Steiner (1980). 

Cuadro 4.1.10 Comparación de las proporciones de 

nutrientes de Ingestad para Pseudotsuga menziesii 

(Douglas fir) y niveles nutricionales completos a dos 

concentraciones de N* 

Proporciones de 

Niveles de nutrientes en 

el fertilizante 

Nutrientes 100 ppm N 200 ppm N 

Macronutrientes 

N 1.00 100 200 

P 0.30 30 60 

K 0.50 50 100 

Ca 0.04 4 8 

Mg 0.05 5 10 

S 0.09 9 18 

Micronutrientes 

Fe 0.007 0.7 1.4 

Mn 0.004 0.4 0.8 

Zn 0.0003 0.03 0.06 

Cu 0.0003 0.03 0.06 

Mo 0.00007 0.007 0.014 

B 0.002 0.2 0.4 

Cl 0.0003 0.03 0.06 

*Algunos de los niveles nutricionales, especialmente Ca, Mg, 

S, Fe y Cu, parecen bajos. Fuentes: Ingestad (1979).
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

25

La cuestión del balance nutricional en las 

soluciones para fertilizar, es obviamente uno de los 

aspectos más confusos en la nutrición vegetal, 

pues muchas de las investigaciones publicadas 

parecen contradictorias. La situación es análoga a 

las vitaminas requeridas por el ser humano: un 

consumidor estará totalmente confundido por las 

recomendaciones publicadas sobre vitaminas, que 

varían desde las que establecen que no se 

requiere de vitaminas suplementarias, hasta las 

que recomiendan megadosis de ciertas vitaminas. 

Por tanto, el viverista deberá darse cuenta que no 

pueden hacerse recomendaciones "fuertes y 

rápidas" acerca del mejor balance nutricional. El 

mejor camino es estar conciente de que las 

proporciones entre nutrientes son importantes, y 

tratar de diseñar un programa de fertilización bien 

balanceado, que produzca plantas de calidad 

aceptable, con base en pruebas de ensayo y error, 

en una situación operativa de viveros. 

Obviamente, se necesita de más investigación en 

relación a las mejores proporciones de nutrientes 

minerales para las especies cultivadas; entre tanto, 

los viveristas deberán tratar de desarrollar 

programas de fertilización que trabajen bajo sus 

propios regímenes de cultivo. 

4.1.5.3 Ajuste por etapas de crecimiento de la 

planta. 

A causa del fuerte efecto de la fertilización en el 

crecimiento de las plantas, los niveles de nutrientes 

tradicionalmente se ajustan para las diferentes 

etapas de crecimiento durante el desarrollo de la 

planta. Para los esquemas de cultivo han sido 

reconocidas tres etapas en el desarrollo de la 

planta: la fase de establecimiento, que 

comprende la germinación y el crecimiento de la 

plántula a través del estadio cotiledonar; la fase de 

crecimiento rápido, cuando las plántulas crecen a 

una tasa exponencial; y la fase de 

endurecimiento, que comienza cuando las plantas 

tienen formadas sus yemas terminales y el 

crecimiento de la parte aérea cesa, pero el 

diámetro basal y el crecimiento de la raíz 

aumentan. 

El control de los niveles de N es el factor más 

importante para manipular el crecimiento de las 

plantas, y los niveles recomendados de fertilización 

con N varían considerablemente durante estos 

estadios de crecimiento (cuadro 4.1.7). Los 

resultados de la Encuesta de Viveros que 

Producen en Contenedor, muestra que los 

viveristas están usando un amplio intervalo de 

niveles de N durante cada etapa de crecimiento. 

Aunque el nivel óptimo de N variará entre viveros y 

entre especies forestales, la tendencia es a adoptar 

niveles similares a los recomendados por Mullin y 

Hallett (1983): N moderado durante la fase de 

establecimiento, elevados niveles durante la fase 

de crecimiento rápido, y bajos niveles de N durante 

la fase de endurecimiento (cuadro 4.1.7). 

La forma adecuada de proporcionar N durante la 

fase de endurecimiento, ha sido objeto de mucha 

discusión, pero la experiencia operativa con 

coníferas del oeste de los EUA, sugiere que los 

fertilizantes basados en nitrato deberán ser 

preferidos sobre aquellos basados en amonio. Se 

piensa que el NH4

+

 estimula el crecimiento 

suculento de la parte aérea, y que retrasa el 

endurecimiento, y por tanto los fertilizantes como el 

nitrato de calcio con frecuencia son usados durante 

el periodo de endurecimiento. Gingrich (1984), 

establece que los fertilizantes con NO3

-

 deberían 

ser utilizados durante los periodos de poca luz 

típicos de fines del otoño, o durante el invierno. No 

obstante, Matthews (1987), reporta que en viveros 

forestales de Columbia Británica, que producen en 

contenedor, han estado cultivando coníferas con 

fertilizantes basados en NH4

+

 durante el periodo de 

endurecimiento, sin problemas aparentes. 

Las proporciones recomendadas de los tres 

principales macronutrientes (N-P-K), también 

varían en las tres etapas de crecimiento; Carlson 

(1983), reporta proporciones diferentes para 

distintas especies de coníferas. Hahn (1978), 

recomendó una proporción de N-P-K de 1:5:1 

durante el crecimiento inicial de plántulas y una 

proporción de 3:1:1 durante la fase de crecimiento 

rápido. Sin embargo, investigaciones recientes 

crean dudas acerca de la necesidad de fertilizantes 

especiales durante las tres etapas. Scarratt (1986), 

refiere que los fertilizantes especiales "iniciador", 

"crecimiento" y "finalizador", no demostraron 

mejora significativa en comparación con los 

fertilizantes estándar de "propósito general" para el 

cultivo en contenedor de plántulas de Pinus 

banksiana (jack pine). No obstante, las diferentes 

especies reaccionan de forma distinta a diferentes 

regímenes de fertilización, aunque se han 

publicado algunas recomendaciones específicas 

(Tinus y McDonald, 1979). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

26

4.1.6 Métodos de Fertilización 

De acuerdo con Handreck y Black (1984), hay tres 

formas básicas para aplicar fertilizantes en viveros 

que producen en contenedor: 

1 Incorporando un fertilizante de lenta liberación 

dentro del sustrato. 

2 Inyectando una solución de fertilizante líquido 

en el agua de riego. 

3 Depositando fertilizantes sólidos en la 

superficie del sustrato. 

En los viveros forestales que producen en 

contenedor en Norteamérica, la técnica de 

fertilización más común es la inyección de 

fertilizante líquido, seguida por la incorporación de 

fertilizantes de liberación lenta (Encuesta de 

Viveros que Producen en Contenedor). El 

agregado superficial es usualmente imposible, a 

causa de la pequeña abertura superior de los 

contenedores empleados para el cultivo de 

especies forestales, y no será contemplado en este 

manual. 

4.1.6.1 Incorporando fertilizantes sólidos al 

sustrato. 

La incorporación de fertilizante sólido al sustrato, 

es más comúnmente usada en plantas cultivadas 

en contenedores de volumen grande, en viveros 

ornamentales, pero también es usada en algunos 

viveros forestales que producen en contenedor. La 

Encuesta de Viveros que Producen en Contenedor, 

reveló que aunque los viveros no utilizan 

exclusivamente fertilizantes incorporados, 26% de 

ellos los usan en combinación con inyección de 

fertilizantes líquidos. Matthews (1982) reporta que, 

cuando las plantas se cultivan con inyección de 

fertilizantes líquidos, la incorporación de bajas 

tasas de fertilizante de liberación lenta en el 

sustrato, mejora el crecimiento de éstas. 

La incorporación de fertilizantes en los sustratos 

tiene varias ventajas: 

1 No se requiere de equipo de inyección de 

fertilizante especializado. 

2 Los costos involucrados en la elaboración de 

mezclas y en las de aplicación de fertilizantes 

líquidos, son bajos. 

3 Los niveles nutricionales también pueden ser 

mantenidos durante los meses húmedos, 

cuando el riego no se requiere, y el lixiviado 

de nutrientes puede representar un problema. 

La incorporación de fertilizantes de liberación lenta 

es necesaria en los viveros que no tienen sistemas 

de riego bien diseñados, o inyectores de nutrientes. 

Los costos involucrados en los trabajos de 

incorporación de fertilizantes, son menores que los 

de la inyección de fertilizante líquido, debido a que 

esta labor solo se requiere durante el proceso de 

mezclado inicial. La formulación, mezclado, y 

aplicación de soluciones de fertilizante líquido, 

requieren de cierto nivel de entrenamiento, y estas 

tareas deben ser realizadas al menos 

semanalmente. En áreas de cultivo al aire libre, 

muchos nutrientes minerales (particularmente el N), 

están sujetos a la lixiviación durante los periodos 

de precipitación abundante a causa del riego, y por 

tanto la inyección de fertilizante líquido no es 

necesaria. En viveros forestales de Columbia 

Británica, que producen en contenedor, 

comúnmente se incorporan fertilizantes de lenta 

liberación en el sustrato, en producciones a cielo 

abierto, sin cubierta, donde la abundante agua de 

lluvia causa severas pérdidas por lixiviación 

(Matthews, 1982). 

Existen tres desventajas principales relacionadas 

con la incorporación de fertilizantes en el sustrato: 

1 Resulta imposible controlar la concentración y 

balance de los nutrientes minerales en la 

solución del medio de crecimiento. 

2 Es difícil obtener una distribución uniforme de 

las partículas de fertilizante en el sustrato 

considerando el equipo comúnmente utilizado 

para la mezcla. 

3 La incorporación requiere de un mezclado 

extra del sustrato, con lo que puede resultar 

rompimiento de las partículas, y originar 

problemas de compactación. 

Una de las verdaderas ventajeas del cultivo de 

plantas en contenedor, es que el crecimiento puede 

ser controlado con precisión, a través de todas las 

fases de desarrollo de la planta, especialmente 

durante el periodo crítico de endurecimiento. El 

control completo de los 13 nutrientes minerales, es 

una de las "herramientas" más efectivas 

disponibles para el viverista, pero este control es 

sacrificado con la incorporación de fertilizantes. 

Las tasas de liberación de nutrientes de los 

fertilizantes de liberación lenta, están controladas 

por varios factores, como temperatura, contenido 

de humedad, y actividad de los microorganismos, 

que están fuera del control del viverista. Una vez 

que la carga de nutrientes ha sido introducida 

dentro del sustrato, es imposible regular por 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

27

completo su disponibilidad. Esto es 

particularmente importante en el caso del N, pues 

el crecimiento de la parte aérea y la latencia de la 

yema apical, son sensibles a la disponibilidad de N, 

y puede ser difícil propiciar el desarrollo de yemas, 

e inducir la latencia, si cantidades de N residuales, 

provenientes de fertilizantes incorporados, 

continúan siendo liberadas en la solución del medio 

de crecimiento. 

El problema de la distribución no uniforme de los 

fertilizantes incorporados representa una 

preocupación real, particularmente con 

contenedores de capacidad pequeña. Siempre es 

difícil lograr un mezclado uniforme cuando se 

trabaja con materiales de dos tamaños o texturas 

diferentes, pues tales materiales tienden a 

separarse durante el almacenamiento o durante su 

manejo. Puede ser difícil obtener la distribución 

uniforme de un volumen pequeño de partículas 

pequeñas, en un volumen grande con partículas 

grandes y livianas, como las de turba y vermiculita. 

Este problema empeora cuando se agrega 

fertilizante seco a un sustrato húmedo, pues el 

fertilizante seco puede adherirse a las partículas 

húmedas del sustrato, y por ello no mezclarse 

uniformemente. La distribución uniforme de las 

partículas de fertilizante, es una preocupación 

especial cuando se trabaja con los contenedores 

de volumen pequeño; es relativamente baja la 

probabilidad de que cada contenedor pequeño, de 

41 o 66 cm3

 (2.5 o 4 pulgadas cúbicas) pueda 

recibir la cantidad adecuada de fertilizante, cuando 

una carga de fertilizante seco se mezcla con un 

sustrato húmedo. 

No es recomendable un mezclado excesivo del 

sustrato, a causa de la natural fragilidad de las 

partículas de turba y de vermiculita; el mezclado en 

exceso, puede acarrear como consecuencia la 

reducción del tamaño de las partículas, la 

compactación, y problemas subsecuentes de 

crecimiento para la raíz. Varios tipos de 

mezcladores no realizan un trabajo adecuado, a 

menos que se dañe la textura de la mezcla, razón 

por la cual la incorporación de fertilizante seco 

deberá realizarse solamente durante la elaboración 

del sustrato. Matthews (1982), menciona que el 

equipo para el mezclado debe ser capaz de 

incorporar fertilizante de lenta liberación en el 

medio de crecimiento, sin romper ni fracturar los 

gránulos del fertilizante (los efectos del mezclado 

excesivo del sustrato, son discutidos en el capítulo 

relativo a medios de crecimiento, en el volumen 

dos de esta serie). 

Los fertilizantes peletizados de liberación lenta, 

como el Osmocote ®, y el Nutricote ®, no deberían 

mezclarse en el sustrato antes del proceso de 

siembra, porque las fugas en las píldoras de 

fertilizante, puede incrementar la conductividad 

eléctrica (CE) de la solución del medio de 

crecimiento hasta niveles peligrosos (fig. 4.1.13). 

Handreck y Black (1984), establecen que, siempre 

que sea posible, los sustratos que contienen 

fertilizantes de liberación lenta, deberán usarse 

inmediatamente después del mezclado. Otros 

fertilizantes incorporados, como el yeso y la 

dolomita, no afectan la salinidad del sustrato (fig. 

4.1.13). 

Figura 4.1.13 La incorporación de fertilizantes de 

liberación lenta, como el Osmocote, dentro del sustrato, 

deberá hacerse inmediatamente antes de la siembra, 

pues las partículas de fertilizante liberarán sales durante 

el periodo de almacenamiento, y esto origina que la 

salinidad del medio de crecimiento aumente. Otros 

fertilizantes incorporados, como el yeso o dolomita, no 

afectan la salinidad del sustrato (Handreck y Black, 

1984).

Incorporación de fertilizantes con 

macronutrientes. Varios nutrientes minerales 

pueden mezclarse con el sustrato durante el 

proceso de llenado de los contenedores. El tipo 

más común de fertilizantes utilizados para 

incorporación dentro del sustrato, contiene 

nutrientes que son relativamente insolubles, y que 

no se lixivian fácilmente, como son P, Ca, y Mg. 

En el mercado están disponibles varias marcas 

comerciales de fertilizantes de "liberación lenta", 

especialmente formulados. 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

28

Caliza o dolomita. A causa de su insolubilidad, el 

Ca y el Mg son difíciles de aplicar como fertilizantes 

líquidos, y por tanto son agregados como caliza 

cálcica (solamente Ca), o como dolomita (Ca y 

Mg), durante el mezclado del sustrato (Muchos 

viveristas, erróneamente usan el término "cal" 

cuando se refieren a la caliza; la cal es óxido de 

calcio (CaO), mientras que la caliza es carbonato 

de calcio (CaCO3). Las tasas recomendadas de 

incorporación, varían de 3 a 5 kg/m3

 (5 a 8 libras 

por yarda cúbica) (cuadro 4.1.11). El tamaño de 

las partículas de la caliza también es importante, 

puesto que los efectos químicos sobre el pH y la 

tasa de liberación de nutrientes son más rápidos 

con partículas pequeñas. La caliza dolomítica de 

grado agrícola, generalmente tiene un tamaño de 

partículas de malla 60, o menor (Ruter y van de 

Werken, 1986). 

Estos fertilizantes algunas veces se agregan a 

sustratos basados en turba, durante el proceso de 

mezclado, para aumentar el inherente bajo pH. 

Algunos fabricantes de sustratos artificiales, de 

manera rutinaria agregan caliza o dolomita a sus 

mezclas, así que uno debiera preguntar en relación 

a esta práctica cuando se compran sustratos 

comerciales. Ruter y van de Werken (1986), y 

Whitcomb (1984), presentan una buena discusión 

acerca de todos los aspectos de esta práctica 

tradicional, y concluyen que los viveristas deberían 

considerar todos los aspectos antes de agregar 

caliza dolomítica al sustrato. Los factores a 

considerar incluyen: 

1 Niveles de Ca y Mg en la fuente de agua de 

riego. Las agua clasificadas como “duras”, 

contienen cantidades significativas de calcio y 

magnesio. Ruter y van de Werken (1986), 

reportan que los niveles aceptables varían de 

40 a 120 ppm de Ca, y de 6 a 24 ppm de Mg. 

Whitcomb (1986) puntualiza que el agua de 

riego con solamente 40 ppm de Ca, puede 

proveer la mayoría, si no todo, el calcio 

requerido para la producción de plantas en 

contenedor. Whitcomb (1984), presenta un 

cuadro para calcular la cantidad de dolomita a 

agregar al medio de crecimiento para aguas 

de riego que contienen diferentes cantidades 

de Ca. 

Cuadro 4.1.11 Fertilizantes de liberación lenta usados para incorporación en sustratos 

Nombre 

comercial 

Tipo de 

fertilizante 

Análisis 

nutricional 

Tasa de liberación Tasa sugerida de 

incorporación 

kg/m3 lb/yd3

Macronutrientes 

Osmocote ® 

17-9-13 

Gránulos con 

cubierta plástica 

17% N 

9% P2O5

13% K2O 

70-90 días 

a 21oC 

3-5 5-9 

Osmocote 

18-6-12 

Gránulos con 

cubierta plástica 

18% N 

6% P2O5

12% K2O 

8-9 meses 

a 21oC 

4-6 6-10 

Superfosfato 

triple 

Granulado 46% P2O5 

14% Ca 

2% S 

-- 0.6-1.2 1-2 

Dolomita Granulado 17% Ca 

12 % Mg 

-- 3* 

0-5+ 

5* 

0-8+ 

Micronutrientes 

Micromax ® Sulfatos Mezcla de 

micronutrientes 

+ S 

más de 18 meses 0.6-1.2 1-2 

Elementos traza 

(residuales) 

Silicatos 

encerrados en 

vidrio 

Mezcla de 

micronutrientes 

6-9 meses 0.13 0.22 

Esmigran ®) Absorbido en 

partículas de 

arcilla 

Mezcla de 

micronutrientes 

-- 3-4 5-6 

Fuente: Matthews* (1983); Whitcomb+ (1984): Tasa dependiente de la cantidad de Ca y Mg en el agua de riego. 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

29

2 La habilidad para proporcionar Ca y Mg en 

forma soluble. El carbonato de calcio y la 

dolomita, son muy insolubles en agua (cuadro 

4.1.12), Whitcomb (1986) estima que, bajo los 

regímenes de riego empleados en los viveros 

que producen en contenedor, puede tomar 

más de 7 años liberar todo el calcio en la 

dolomita, mientras que el magnesio puede ser 

liberado una vez completado un tercio de la 

estación de crecimiento. Esta disparidad en 

las tasas de liberación de nutrientes, podría 

acarrear un desbalance en la proporción 

calcio/magnesio, ocasionando problemas 

nutricionales (Whitcomb, 1984). En muchos 

viveros se inyecta todo el Ca y el Mg en forma 

de fertilizantes solubles como el nitrato de 

calcio y el sulfato de magnesio (cuadro 

4.1.12). La inyección de fertilizante líquido, 

permite al viverista controlar tanto el nivel total 

como el balance de estos importantes 

macronutrientes. 

Cuadro 4.1.12 Solubilidad de fuentes potenciales de Ca 

y Mg. 

Compuesto químico Solubilidad en agua 

(g/100 ml a 25oC) 

Oxido de magnesio 

Carbonato de calcio 

Dolomita (carbonatos de 

calcio y magnesio) 

Oxido de calcio 

Sulfato de calcio 

Sulfato de magnesio 

Nitrato de calcio

menor de 0.01

0.01

0.03

0.12

0.24

91.00

100.00

Fuente: Jones (1982). 

3 Respuesta de las especies a los niveles de 

pH, Ca y Mg. Algunas especies que prefieren 

suelos ácidos, tienen requerimientos 

relativamente bajos de estos nutrientes, y 

pueden ser dañadas con elevados niveles de 

Ca. 

La adición de dolomita a los sustratos artificiales, 

ha ocasionado problemas de crecimiento con 

algunas especies de coníferas. Dangerfield (1978), 

halló que la adición de dolomita a un sustrato de 

turba y vermiculita, indujo clorosis por cal en 

plantas de Pseudotsuga menziesii (Douglas fir), y 

Hathaway y Whitcomb (1984), reportan que la 

dolomita redujo significativamente la altura y el 

peso de las plantas de Pinus thunbergiana

(Japanese black pine). 

Fósforo. El fósforo es otro nutriente que a veces 

es incorporado en el medio de crecimiento. El P 

puede ser proporcionado en forma de superfosfato 

simple o triple (concentrado) (cuadro 4.1.11). El 

superfosfato simple (0-20-0), proporciona calcio, 

fósforo, y azufre, mientras que el superfosfato triple 

(0-45-0), no contiene azufre (Gingrich, 1984). 

Fertilizantes de liberación lenta. Otros tipos de 

fertilizantes que son comúnmente mezclados en los 

medios de crecimiento, incluyen formulaciones de 

lenta liberación, o de liberación controlada. 

Mastalerz (1977) y Sanderson (1987), presentan 

una excelente discusión acerca de los diferentes 

tipos de fertilizantes de liberación lenta y de sus 

características, y Sanderson (1987), los agrupa en 

cinco diferentes categorías, tres de las cuales son 

de uso común en los viveros que producen en 

contenedor. 

Fertilizantes encapsulados solubles en agua. 

Consisten en un fertilizante sólido N-P-K 

encapsulado en una esfera de resina plástica: la 

cápsula permite al agua pasar hacia dentro y 

disolver los nutrientes, los cuales son liberados 

osmóticamente a las plantas (fig. 4.1.14). El 

Osmocote, el Nutricote, y la urea con cubierta de 

azufre son ejemplos de este grupo. La urea con 

cubierta de azufre rara vez es utilizada en los 

viveros forestales, pues su tasa de liberación de 

nitrógeno representa un problema, pero el 

Osmocote y el Nutricote son usados en algunos 

viveros. 

Tanto las formas amonio o nitrato del N son 

empleadas en las diferentes formulaciones. La 

frecuencia de riego y la temperatura del medio de 

crecimiento, son los principales factores 

ambientales que controlan la tasa de liberación de 

nutrientes (Sanderson, 1987). La formulación de 

los nutrientes también afecta la liberación de éstos; 

Crowley et al. (1986), encontró diferencias 

significativas en la liberación acumulada de sales 

de fertilizante de tres formulaciones diferentes de 

Osmocote de 8-9 meses (tiempo de liberación) (fig. 

4.1.15). 

El Osmocote está disponible en diferentes 

formulaciones de N-P-K, con tasas de liberación 

variando de 3 a 14 meses. Una nueva formulación 

en micropíldoras de Osmocote, y una formulación 

que contiene todos los macro y micronutrientes 

(Sierra®), está disponible actualmente (fig. 4.1.14). 

Matthews (1983), recomienda que el Osmocote sea 

usado como el fertilizante principal para las 

especies forestales producidas en contenedor al 

aire libre, y aconseja incorporar al sustrato la 

formulación 18-6-12 (cuadro 4.1.11). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

30

Fertilizantes inorgánicos de baja solubilidad. El 

MagAmP®, es un fertilizante comercial, de tan baja 

solubilidad, que después de ser pasado por una 

esterilización con vapor, liberará pocos nutrientes. 

Este fertilizante está disponible en dos tamaños de 

partículas diferentes (gruesa y mediana), lo cual 

representa el factor que controla la liberación de 

nutrientes. El nitrógeno es proporcionado como 

fosfato amonio magnesio (de aquí el nombre 

comercial), pero Sanderson (1987) reporta que la 

tasa de liberación de N es muy baja para algunas 

plantas ornamentales. 

Fertilizantes orgánicos de baja solubilidad. Este 

grupo está representado por fertilizantes con ureaformaldehido, como las tabletas Agriform®, y el 

IBDU, los cuales lentamente son descompuestos 

por hidrólisis o por actividad biológica. La 

liberación de nutrientes de estos fertilizantes, está 

controlada por el tipo de medio de crecimiento, el 

pH del sustrato, la temperatura de éste, y las 

poblaciones de microorganismos (Sanderson, 

1987). Consecuentemente, la liberación de 

nutrientes es pobre en medios de crecimiento a 

bajas temperaturas, o con bajas poblaciones de 

microorganismos, como es el caso de los sustratos 

artificiales. 

Incorporación de fertilizantes con 

micronutrientes. Varios fertilizantes comerciales 

con micronutrientes pueden ser incorporados al 

sustrato (cuadro 4.1.11). El Micromax®, es una 

mezcla balanceada de microelementos en una 

forma de sulfato soluble, que es lentamente 

liberado cuando es mezclado con el sustrato 

(Whitcomb, 1984). Los micronutrientes FTE No. 

555®, con frecuencia también son mezclados 

previamente en el medio de crecimiento; este 

fertilizante consiste de fragmentos cristalinos que 

contienen todos los micronutrientes. Éstos son 

liberados lentamente en la solución del medio de 

crecimiento durante el ciclo de cultivo, 

proporcionando una fuente constante y balanceada 

de fertilizante con micronutrientes (Bunt, 1976). El 

Esmigran®, es otro fertilizante que consiste de una 

mezcla de microelementos adsorbida en partículas 

de arcilla, que lentamente liberan los nutrientes a la 

solución del suelo. 

Existen varias marcas de fertilizantes con 

micronutrientes quelatados. Los quelatos son 

formas orgánicas ligadas de microelementos 

metálicos (Fe, Mn, Zn y Cu), las cuales previenen 

que estos iones se liguen químicamente con otros 

nutrientes, como P, Ca, Na y HCO3. Los 

fertilizantes con micronutrientes quelatados, han 

probado ser efectivo, pero tienen varias 

desventajas (Whitcomb, 1983): 

1 Son afectados por ciertos otros 

micronutrientes. 

2 Son caros. 

3 Los micronutrientes, en algunos quelatos, 

pueden ser reemplazados por otros 

elementos, como el Ca, en el medio de 

crecimiento. 

Las ventajas de los fertilizantes quelatados, sobre 

otros fertilizantes solubles con micronutrientes, no 

han sido estudiadas, aunque éstos deberían probar 

ser benéficos en viveros con problemas especiales, 

como agua de riego salina. 

Figura 4.1.14 El Osmocote, es un fertilizante de lenta 

liberación, que está disponible en diferentes 

formulaciones, incluyendo las micropíldoras (izquierda), 

diseñadas para usarse en contenedores pequeños. 

Figura 4.1.15 Los fertilizantes de liberación lenta, 

pueden variar considerablemente en sus tasa de 

liberación de nutrientes. Tres formulaciones distintas de 

fertilizante Osmocote de 8-9 meses (tiempo de 

liberación), tuvieron diferentes tasas acumuladas de 

liberación de sales fertilizantes (de Crowley et al., 1986). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

31

Broschat y Donselman (1985), investigaron la 

extractabilidad del Fe, del Mn, del Zn y del Cu, de 

un sustrato artificial al cual se le habían aplicado 

varios fertilizantes con micronutrientes, y 

encontraron que la disponibilidad varió entre los 

distintos micronutrientes. El Zn, el Mn y el Cu, 

fueron rápidamente extraíbles con los fertilizantes 

con sulfato, óxido o adsorbidos en arcilla, pero la 

disponibilidad del Fe fue restringida en la 

formulación Esmigran®. Las formas quelatadas de 

los micronutrientes [Sequestrene®], fueron 

efectivas, especialmente para el Fe, aunque éstos 

se lixiviaron del sustrato con el tiempo. Whitcomb 

(1983), estudió la aplicación de fertilizantes con 

distintos micronutrientes a sustratos artificiales, y 

encontró que los de tipo soluble resultaron más 

efectivos que las formas FTE No. 555®. 

4.1.6.2 Inyectando soluciones de fertilizante al 

sistema de riego. 

El método más popular para aplicar fertilizantes en 

los viveros forestales que producen en contenedor, 

y el recomendado por el autor, es la inyección 

directa de fertilizante líquido en el sistema de riego 

(fig. 4.1.16). Los beneficios de esta técnica, son 

considerables: 

1 Control preciso de la concentración y del 

balance de los 13 nutrientes minerales en el 

agua de riego aplicada. 

2 Capacidad para cambiar completamente la 

solución nutritiva en cualquier momento. 

3 Muy baja posibilidad de fertilizar en exceso, y 

por tanto, de dañar por exceso de sales. 

Figura 4.1.16 La inyección de fertilizantes líquidos es un 

método de fertilización eficiente, pero los inyectores 

deberán diseñarse para ser compatibles con el sistema 

de riego. 

Aunque es muy recomendada la inyección de 

fertilizante líquido, tiene ciertos requerimientos que 

pueden ser desventajas en la operación de viveros 

pequeños: 

1 La necesidad de equipo especial de inyección 

2 Elevados costos, asociados con el frecuente 

mezclado y aplicación de fertilizantes líquidos. 

3 Es esencial un sistema de riego automatizado 

bien diseñado, para asegurar una aplicación 

uniforme de fertilizante. 

Tipos de sistemas de inyección de fertilizantes. 

Existe una buena selección de equipos de 

inyección de fertilizantes, disponible para el 

viverista que produce plantas en contenedor, los 

cuales varían en términos de características y 

costo. La elección de un inyector de fertilizantes, 

con frecuencia es influida por el costo: el precio de 

un inyector nuevo, puede ser tan barato como US$ 

10 o alcanzar más de US$ 10 000 (cuadro 4.1.13). 

El inyector también debe ajustarse con el sistema 

de riego, así que el viverista debe elegir un modelo 

que sea compatible con su sistema de riego (fig. 

4.1.16). 

Nelson (1978) refiere los componentes básicos de 

un sistema de inyección (fig. 4.1.17). El inyector no 

deberá instalarse sobre la línea de riego principal, y 

sí sobre una derivación, de esta forma el agua de 

riego “limpia” puede ser aplicada cuando se desee. 

En muchas áreas, por ley, debe instalarse un 

dispositivo que prevenga el flujo en retroceso, a 

efecto de evitar que accidentalmente se introduzca 

fertilizante en los sistemas de agua domésticos. 

Los sistemas de inyección automatizados, pueden 

diseñarse para instalar un medidor de sales 

solubles en la línea de salida, para la supervisión 

de la dosificación de la solución de fertilizante 

aplicada. 

Entre los principales tipos de sistemas de inyección 

de fertilizante, que son usados en viveros 

forestales que producen en contenedor, están los 

siguientes (Mastalerz 1977, Furuta 1978): 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

32

Cuadro 4.1.13 Especificaciones técnicas de algunos inyectores de fertilizantes. 

Marca Modo de 

acción 

Tasa de 

flujo 

(gpm) 

Presión de agua 

en operación 

(PSI) 

Tasas de 

inyección 

Capacidad 

concentrada

Costo en 1984 

(US$) 

Hozon Vénturi 3 Ninguna Fija 

1:16 

Ninguna 10 

Dosmatic 

(Profel) 

Bomba de agua Mayor de 6 8 – 85 Ajustable 

1:100- 1:200 

Ninguna 250 

HPA* Bomba de agua 

o eléctrica 

50 - 400 Mayor de 45 Fija 

1:100 – 1:1600 

Ninguna 1,600-5,000 

Gewa* Desplazamient

o 

Ninguna Ninguna Ajustable 

1:20 – 1:300 

4-26 galones 400 – 1,000 

Fert o-Ject* Bomba de agua 

o eléctrica 

2 - 120 20 - 140 Fija 

1:100 – 1:200 

Ninguna 1,000 – 4,000 

Smith* Bomba de agua 50 - 700 Ninguna Fija 

1:100 – 1:1600 

Ninguna 1,000 – 13,000

Anderson* Bomba de 

Desplazamient

o de agua 

1-160 Más de 15 Ajustable Ninguna 700 – 5,000 

*Las especificaciones varían entre modelos./Fuente: modificado de Nelson (1978). 

Sistema de tanque y bomba. Este representa 

una forma económica y simple desde el punto de 

vista mecánico, para aplicar fertilizantes líquidos. 

El sistema consiste en un gran tanque de 

mezclado, en el cual el fertilizante líquido es 

mezclado a presión, y bombeado a través del 

sistema de riego. La principal ventaja de del 

sistema de tanque y bomba, es que es imposible 

fertilizar en exceso y quemar a las plantas, puesto 

que la solución siempre está a fuerza de aplicación. 

La mayor desventaja es que el tanque de solución 

con fertilizante necesariamente debe ser grande, 

para propiciar una fuerza suficiente de aplicación 

del fertilizante y se cubra toda el área a fertilizar. 

Figura 4.1.17 Diagrama esquemático de un sistema típico de inyección de fertilizante, para un vivero que produce en 

contenedor (adaptado de Nelson, 1978). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

33

Inyector de succión Vénturi. Este es uno de los 

más viejos y simples tipos de sistemas de 

inyección, y opera sobre el principio del tubo de 

Vénturi. Cuando el agua es forzada a través de 

una sección de tubería estrecha, ésta gana 

velocidad, y crea una reducción de la presión del 

agua. Cuando un tubo con aún menor diámetro es 

ajustado a la sección anterior, la reducción en la 

presión provocará que el líquido en el tubo lateral 

sea aspirado dentro de la tubería de riego. Estos 

inyectores Venturi, por tanto, pueden ser usados 

como inyectores de fertilizante líquido; son tan 

precisos como sean uniformes el flujo de agua y la 

presión, pero la tasa de inyección puede cambiar 

ante condiciones variables. El inyector Hozon®, un 

ejemplo de este tipo disponible en el mercado, 

inyecta a una tasa de aproximadamente 1:16 

(cuadro 4.1.13). 

Inyector de desplazamiento. Este tipo de 

inyector, como el Gewa®, opera sobre la base de 

un tanque portátil, con un revestimiento plástico 

plegable. La solución de fertilizante es colocada 

dentro del tanque revestido, que entonces es 

sellado y conectado al sistema de riego. La 

presión del agua que entra al tanque, obliga a la 

solución de fertilización fuera del revestimiento 

plástico y dentro de la línea de riego, a una tasa de 

inyección especificada. El inyector Gewa tiene una 

tasa de inyección variable, que puede ser ajustada 

de 1:20 a 1:300 (cuadro 4.1.13). 

Inyector de bomba de desplazamiento positivo. 

La mayoría de estos inyectores usan bombas de 

agua para inyectar una determinada cantidad de 

solución de fertilizante dentro de la línea de agua, y 

operan a una velocidad que es proporcional al flujo 

de agua. Estos miden con precisión cualquier 

presión de línea, o tasa de flujo, y generalmente no 

requieren de tanque de mezclado. Están 

disponibles varias marcas de inyectores tipo bomba 

de desplazamiento positivo, un ejemplo típico es el 

inyector Smith Measuremix®; éstos generalmente 

son más caros que los otros tipos, y están 

disponibles con una variedad de tasas de inyección 

(cuadro 4.1.13). 

Fertilizantes comerciales para inyección. 

Existen varios tipos de fertilizantes completamente 

solubles en agua, disponibles en el mercado, para 

uso en inyección líquida (fig. 4.1.18). Algunas 

formulaciones contienen sólo N-P-K, mientras que 

otras también contienen S, y los micronutrientes. 

Estos fertilizantes no pueden contener Ca o Mg, 

pues estos nutrientes forman precipitados 

insolubles en las soluciones de fertilizante 

concentradas. Las proporciones de nutrientes son 

fijas, lo que significa que aunque la concentración 

total de nutrientes puede ser cambiada, no hay 

forma de ajustar el balance entre nutrientes. Las 

mezclas comerciales son relativamente caras, pero 

son fáciles de usar; otra ventaja es que solamente 

se requiere de una remesa de solución, y por tanto 

puede ser utilizado un inyector con sólo una 

cabeza, que es más barato. 

4.1.18A 

4.1.18B

Figura 4.1.18 Varias marcas de fertilizantes solubles 

están disponibles para la inyección al sistema de riego. 

Algunas están diseñadas específicamente para especies 

de coníferas (A), mientras que otras están formuladas 

específicamente para diferentes etapas de cultivo en las 

plantas (B). 

Fertilizantes hechizos para inyección. Muchos 

viveristas seleccionan materiales químicos para 

formular sus propias mezclas de fertilizante para 

proporcionar los 13 micronutrientes minerales (fig. 

4.1.19). Estos productos químicos separados, 

generalmente son más baratos que los fertilizantes 

comerciales, pero necesitan de más espacio para 

ser almacenados, pues son requeridas más bolsas 

con productos químicos. Las mezclas hechizas, 

deben ser preparadas regularmente, así que se 

invierte más trabajo en comparación con el uso de 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

34

fertilizantes comerciales, además la mayoría de las 

mezclas hechizas requieren de un inyector con dos 

cabezas. El principal atractivo de este tipo de 

mezclas, es que puede diseñarse un programa de 

fertilización balanceado, y pueden aplicarse los 

nutrientes requeridos prontamente en el agua de 

riego, y la concentración de cada uno de éstos 

puede ser ajustada en cualquier momento durante 

la etapa de cultivo. Los cálculos para formular las 

mezclas hechizas son relativamente complicados, 

en comparación con las mezclas comerciales de 

fertilizante, pero una vez que se han logrado, la 

mezcla de los ingredientes es simple. 

 4.1.19A

 4.1.19B

Figura 4.1.19 Las soluciones hechizas de fertilizante 

pueden ser formuladas a partir de productos químicos, 

como las sales Epsom (A). Estos productos químicos 

son mezclados para formar soluciones concentradas (B).

Fertilización foliar. La inyección de fertilizante 

líquido ha sido utilizada para aplicar fertilizantes 

foliares, y ha encontrado una aplicación limitada en 

viveros ornamentales. Los asperjados foliares 

pueden ser usados para tratar deficiencias 

menores de algunos nutrientes minerales, pero no 

pueden ser utilizados como la única fuente de 

fertilizante, porque la tasa de absorción es mucho 

más lenta a través del tejido foliar que a través del 

sistema radical. La fertilización foliar, lógicamente 

deberá ser más efectiva con especies de hoja 

ancha, puesto que la cutícula cerosa de la mayoría 

de las coníferas hará más lenta la absorción de 

nutrientes. Alexander y Schroeder (1987), 

presentan una buena revisión de las aplicaciones 

prácticas de la fertilización foliar en horticultura. 

Los fertilizantes foliares son aplicados como 

soluciones diluidas. Al formular fertilizantes 

foliares, la urea es la fuente de N preferida. 

Handreck y Black (1984), presentan recetas para 

asperjado foliar con N, K y algunos microelementos 

(Fe, Zn, Mn, Cu y Mo). Las formulaciones de 

fertilizante foliar, también están disponibles en el 

mercado bajo algunas firmas comerciales. El 

equipo de aplicación debe ser capaz de producir 

una fina nebulización, y con frecuencia se emplea 

un agente surfactante (humectante), para asegurar 

que la solución de fertilizante sea asperjada 

uniformemente sobre la superficie foliar. 

Usualmente los asperjados foliares son aplicados 

bajo condiciones húmedas, frecuentemente 

durante el anochecer, para que la solución se 

mantenga en contacto con el follaje por un mayor 

periodo de tiempo. Algunos viveristas aplican 

regularmente la solución de fertilizante, a efecto de 

mantenerla sobre el follaje de las plantas, y así 

promover la absorción foliar. Esta práctica no es 

recomendable porque las soluciones con 

fertilizante más concentradas pueden quemar el 

follaje suculento. En los viveros forestales, la 

fertilización foliar ha sido usada en primera 

instancia para tratar deficiencias de 

micronutrientes, como la clorosis por deficiencia de 

hierro, pero también puede ser empleada para 

proporcionar un rápido "enverdecimiento" antes de 

que la planta sea embarcada (fig. 4.1.20). Como 

con toda nueva técnica de cultivo, los viveristas 

que desean probar la fertilización foliar, primero 

deberán hacerlo a pequeña escala. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

35

Figura 4.1.20 Aunque la fertilización foliar no puede ser 

usada para proporcionar todos los nutrientes minerales 

para las plantas de especies forestales que son 

producidas en contenedor, los asperjados foliares 

pueden ser empleados para corregir deficiencias de 

micronutrientes, o para "enverdecer" las plantas antes de 

ser embarcadas (las plantas de la derecha fueron 

tratadas; las de la izquierda son el testigo).
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Volumen 4: Fertilización y Riego

36

4.1.7 Formulando Soluciones de Fertilizante 

4.1.7.1 Determinando el nivel de nutrientes del 

agua de riego. 

Independientemente del tipo de fertilizante 

utilizado, el primer paso para desarrollar un 

programa de inyección de fertilización, es 

determinar qué nutrientes están presentes en el 

agua de riego, y en qué concentración (Vetanovetz 

y Knauss, 1988). Desafortunadamente, este 

importante paso con frecuencia es obviado por 

muchos viveristas, quienes erróneamente asumen 

que el agua de riego es de calidad uniforme. El 

agua natural, usualmente contiene concentraciones 

apreciables de varios nutrientes para las plantas, 

especialmente calcio y magnesio (Ca y Mg), 

inclusive algunas aguas "duras" contienen 

suficiente cantidad de estos nutrientes para 

satisfacer parcial o totalmente los requerimientos 

de las plantas (Jones, 1983; Whitcomb, 1986). La 

Encuesta en Viveros, reveló que sólo un pequeño 

porcentaje de los viveristas que producen en 

contenedores analizan el agua de riego, 

contemplando todos los nutrimentos minerales. 

Los análisis de nutrientes minerales del agua de 

riego pueden ser realizados por la mayoría de los 

laboratorios de pruebas analíticas, pero los 

viveristas deberán asegurarse de especificar que 

ellos requieren un análisis de nutrientes, en lugar 

de una prueba estándar de calidad del agua. 

Puesto que muchos de los iones son los mismos 

en ambas pruebas, será juicioso contar con análisis 

tanto de nutrientes en el agua, como de calidad de 

ésta, tomados al mismo tiempo. Un análisis 

completo de agua cuesta alrededor de US$ 50 a 

US$ 100 (Las pruebas de calidad del agua son 

discutidas a detalle en la sección 4.2.4.2). 

Un ejemplo de análisis de agua de riego, 

correspondiente al vivero Mt. Sopris, en 

Carbondale, Colorado, EUA, se presenta en el 

cuadro 4.1.14. Las concentraciones de todos los 

nutrientes en el agua de riego, son reportadas en 

partes por millón (ppm) Cuando solicite una prueba 

de agua, todos los nutrientes deberán ser 

reportados en partes por millón, aunque el 

laboratorio puede dar valores en miligramos por 

litro (mg/l), una unidad de medición equivalente 

(ver cuadro 4.1.6). En el cuadro 4.1.14, ambas 

formas de N, NO3

-

 y NH4

+

 fueron analizadas, pero 

para la mayoría de los propósitos, una prueba de N 

total es suficiente. Note que algunos 

macronutrientes, como el P, y muchos 

micronutrientes, pueden existir en concentraciones 

muy bajas en el agua natural, algunos de éstos 

pueden estar en una concentración tan baja, que 

no pueden ser detectados por los instrumentos 

analíticos. El pH y la conductividad eléctrica (CE) 

del agua, son reportadas rutinariamente junto con 

los nutrientes. La conductividad eléctrica, es la 

concentración relativa de sales disueltas en el agua 

de riego, y es reportada en unidades de 

microSiemens por centímetro (μS/cm). Cada 

vivero debería tener sus propios medidores de pH y 

de CE, y debería realizar sus propias pruebas con 

regularidad, para supervisar los cambios en la 

calidad del agua; la supervisión de la fertilización 

se discute con más detalle en la sección 4.1.9. 

Cuadro 4.1.14 Comparación de los nutrientes en el agua 

de riego y en la solución de fertilizante, además de los 

niveles óptimos (Vivero Mt. Sopris, 1980). 

Unidades Agua 

de 

riego 

Solución de 

fertilizante 

aplicada 

Niveles 

óptimos 

Macronutrientes 

N total ppm 3 181 222 

NO3-N ppm 3 170 156 

NH4

3

-N ppm 0 11 66 

P ppm 0.07 54 60 

K ppm 2 140 155 

Ca ppm 82 80 60 

Mg ppm 14 48 40 

SO4-S ppm 43 135 63 

Micronutrientes 

Fe ppm ND 2.6 4.0 

Mn ppm ND 1.1 0.5 

Zn ppm ND 0.07 0.05 

Cu ppm ND 0.07 0.02 

Cl ppm 3.00 4.00 4.00 

Mo ppm ND ND 0.01 

B ppm 0.06 0.14 0.5 

Calidad del agua 

pH -- 6.9 6.0 5.5 

CE μS/cm 470 1,680 1,200 – 

1800 

ND = Valores muy bajos para ser detectados por los 

instrumentos. 

4.1.7.2 Controlando el pH del agua de riego. 

Una vez que es conocido el nivel de nutrientes en 

al agua, la capacidad de amortiguamiento de ésta 

deberá determinarse mediante titulación ácida. La 

titulación es un procedimiento en el cual se 

agregan pequeñas cantidades de ácido a una 

muestra de agua de riego, a efecto de determinar 

la cantidad de ácido requerida para reducir el pH 

de ésta a un nivel deseado (pH=5.5). La titulación 

puede hacerla cualquier laboratorio de análisis de 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

37

aguas, o por el personal del vivero utilizando un 

medidor de pH y una bureta o pipeta. Cualquier 

ácido puede ser empleado para realizar esta 

prueba, siempre que la normalidad sea conocida 

para que las conversiones de acidez relativa 

puedan ser ejecutadas. 

Para simplificar los cálculos, un procedimiento es 

usar una solución de ácido fosfórico (H3PO4) al 1%. 

Este ácido, al 75 u 85% es empleado con 

frecuencia en las mezclas de fertilizante para 

reducir el pH y para agregar P. Una solución al 1% 

de este ácido puede hacerse a partir del ácido al 

85% agregando 11.75 ml de éste a un volumen de 

agua destilada hasta completar un litro de solución. 

Como medida de seguridad, siempre agregue el 

ácido al agua: llene parcialmente el recipiente con 

agua, agregue entonces el ácido a ésta, y después 

agregue el resto del agua. Una vez que es 

conocida la cantidad de ácido fosfórico al 1% 

necesaria para reducir el pH de la muestra de 

agua, la conversión para la solución de ácido al 

75% o al 85% se realiza dividiendo entre 75 u 85, 

respectivamente. 

Las curvas de titulación para el agua de riego en el 

Vivero Mt. Sopris, y para el Vivero del Servicio 

Forestal del Estado de Colorado, en Ft. Collins, 

Colorado, EUA, se muestran en la figura 4.1.21. 

Note la diferencia entre las dos curvas: a mayor 

pendiente de la curva, menor capacidad de 

amortiguamiento del agua. El agua del Vivero del 

Estado de Colorado, tiene una muy baja capacidad 

de amortiguamiento, y requiere solamente de 3 ml 

de H3PO4 para reducir el pH de 1 litro de agua de 

riego al nivel deseado, mientras que el agua del 

Vivero Mt. Sopris requiere de casi 16 ml de H3PO4

al 1%. Debido a que la cantidad de ácido 

probablemente necesitará ser ajustada por razones 

relacionadas con las estaciones, es necesario 

llevar a cabo la supervisión regular del pH. El pH 

también cambiará después de que hayan sido 

agregados fertilizantes químicos a la solución, así 

que pueden ser necesarios otros pequeños ajustes. 

Varios ácidos han sido utilizados en los sistemas 

de inyección en los viveros forestales que producen 

en contenedor, incluyendo el nítrico, el sulfúrico, el 

fosfórico, y aún el ácido acético. El ácido fosfórico 

deberá usarse siempre que sea posible, pues 1) es 

el más seguro de manipular, 2) no reacciona 

violentamente con el agua ni produce gases 

tóxicos, y 3) es una fuente de P. Jaramillo y 

Owston (1977), concluyen que el ácido fosfórico es 

el más seguro de usar aunque sea más caro y, 

recomiendan los grados "food" ("alimento") o 

"reagent" ("reactivo"), puesto que otros grados 

pueden contener metales pesados fitotóxicos. Sin 

embargo, considerando que se usa una muy 

pequeña cantidad en la acidificación, la posibilidad 

de originar un problema serio de fitotoxicidad, es 

remota. (Una lista de grados químicos puede 

apreciarse en la sección 4.1.7.4). Si el agua de 

riego es muy alcalina, el ácido sulfúrico puede ser 

utilizado, porque la cantidad de ácido fosfórico que 

sería requerida para reducir el pH, agregaría una 

cantidad excesiva de P a la solución. 

Figura 4.1.21 Curvas de titulación con ácido para el 

agua de riego en dos diferentes viveros forestales que 

producen en contenedor, en Colorado. Estas curvas 

fueron desarrolladas agregando sucesivamente 1 ml de 

ácido fosfórico al 1% a 1 litro de agua de riego. 

4.1.7.3 Cálculos de las soluciones con 

fertilizantes comerciales. 

Con base en los resultados de la Encuesta de 

Viveros, el 88% de los que producen en contenedor 

en Norteamérica usan marcas comerciales de 

fertilizantes, solos o en combinación con mezclas 

hechizas, para la inyección en el sistema de riego. 

Algunas marcas comerciales contienen tanto 

macronutrientes como micronutrientes, mientras 

que otras sólo contienen los elementos mayores. 

Verifique la etiqueta para determinar la 

composición exacta de nutrientes; los nutrientes 

que aporta un fertilizante comercial (Peters Conifer 

Grower ® ), a una tasa de 100 ppm de N, son 

referidos en el cuadro 4.1.15. 

Macronutrientes. Un ejemplo del contenido de 

nutrientes y de las instrucciones de mezclado para 

un fertilizante típico, se proporciona en el cuadro 

4.1.16. Observe que el análisis de nutrientes es 

dado en nitrógeno total (N), ácido fosfórico en su 

forma disponible(P2O5), y potasio soluble (K2O). 

Los dos últimos términos pueden ser convertidos a 

%P y %K usando los factores de conversión del 

cuadro 4.1.4. El peso del fertilizante a agregar a 1 

litro de agua para hacer 1 litro de fertilizante líquido 

concentrado, es proporcionado en la parte final del 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

38

cuadro 4.1.16. Para calcular las concentraciones 

de todos los nutrientes, siga el procedimiento 

siguiente: 

Cuadro 4.1.15 Concentración de nutrientes en una 

solución típica de fertilizante comercial aplicado a una 

tasa de inyección 1:200, para proporcionar una 

concentración objetivo de 100 ppm de N. 

Nivel del nutriente (ppm)

Macronutrientes 

N 100

P 15

K 79

Ca 0

Mg 1.5

S 2.0

Micronutrientes 

Fe 2.0

Mn 0.3

Zn 0.3

Cu 0.3

Mo 0.025

B 0.125

Cl No proporcionado

1 Establezca el nivel deseado de N para la 

solución de fertilizante a aplicar (por ejemplo, 

100 ppm). 

2 Determine qué tanto fertilizante debe usar para 

producir la concentración deseada (100 ppm). 

El fertilizante en nuestro ejemplo es 20-7-19, o 

20% N: 

100 ppm = (100 mg/l) / 0.20 

= 500 mg/l de fertilizante 

3 Ajuste a la tasa de inyección del nutriente (por 

ejemplo, 1:200): 

(500 mg/l de fertilizante) (200) 

= 100,000 mg/l de fertilizante 

4 Convierta de miligramos por litro a gramos por 

litro: 

(100 000 mg/l) / 1000 mg/g 

= 100 g/l de fertilizante 

Si está utilizando unidades inglesas, convierta 

gramos por litro a onzas por galón: 

(100 g/l) (0.1334) 

= 13.34 onzas de fertilizante por galón de 

agua 

(Observe que este valor está acorde con el de 

las instrucciones de mezclado en el cuadro 

4.1.16). 

5 Ahora que hemos establecido la cantidad de 

fertilizante 20-7-19 (paso no. 2) requerido para 

proporcionar la concentración de N deseado 

(paso no. 1), necesitamos calcular qué tanto P 

estará contenido en la solución de fertilizante 

aplicada (el fertilizante contiene 7% de P2O5): 

(500 mg/l) (0.07) = 35 ppm P2O5 

6 Utilizando el factor de conversión del cuadro 

4.1.4, convierta de la forma de óxido (P2O5), a 

la forma elemental: 

(35 ppm P2O5) (0.4364) = 15 ppm P 

7 Empleando un proceso similar al de los pasos 

no. 5 y 6, calcule la cantidad de K que el 

fertilizante 20-7-19 proporciona a la solución de 

fertilizante aplicado (el fertilizante contiene 19% 

de K2O): 

(500 mg/l) (0.19) = 95 ppm K2O 

(95 ppm K2O) (0.8301) = 79 ppm K 

Registre las concentraciones de los otros nutrientes 

que estén incluidos en la etiqueta del fertilizante, 

para la concentración de N. Por ejemplo, las 

concentraciones reales para un fertilizante típico a 

100 ppm de N, son mencionadas en el cuadro 

4.1.15. 

Han sido desarrolladas un conjunto de tablas para 

determinar con facilidad y rapidez la cantidad de 

fertilizante a agregar para un intervalo deseado de 

concentraciones de N, y para diferentes tasas de 

inyección de nutrientes (cuadro 4.1.17). Recuerde 

que estas tablas solamente proporcionan niveles 

de N, y que los niveles de P, K y otros nutrientes, 

son determinados a partir de los componentes del 

fertilizante. 

Micronutrientes. Algunos fertilizantes comerciales 

no contienen micronutrientes complementarios. 

Por tanto, se requiere de una fertilización 

suplementaria con micronutrientes, puesto que los 

sustratos artificiales contienen poco o ninguno de 

éstos (ver sección 4.1.3.1). La deficiencia de hierro 

es una de las más comunes en los viveros 

forestales que producen en contenedor, y se 

expresa como clorosis y “achaparramiento” o 

reducción del crecimiento (ver fig. 4.1.7A). Scarratt 

(1986), reporta una clorosis moderada y bajos 

niveles de Fe foliar en Pinus banksiana (jack pine) 

producido en contenedor, utilizando fertilizantes 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

39

comerciales de "propósito general". Se prescriben 

aplicaciones de sulfato ferroso dos veces por 

semana, para complementar a los fertilizantes 

comerciales, y así prevenir la clorosis por 

deficiencia de hierro en los viveros de Columbia 

Británica (Matthews, 1982). Los fertilizantes con 

hierro quelatados, a veces se prefieren en lugar del 

sulfato de hierro porque, aunque son más caros, 

son más disponibles para la absorción de la planta 

bajo un amplio intervalo de condiciones de 

sustrato. La deficiencia de cobre también puede 

representar un problema en los medios de 

crecimiento formulados a base de turba, y los 

síntomas de deficiencia han sido identificados en 

algunas especies de coníferas (ver figura 4.1.7B). 

Scarratt (1986) reporta que, en un análisis químico 

estándar practicado a un sustrato estándar de 

turba-vermiculita, el cobre resultó ser el único 

micronutriente ausente. 

Cuadro 4.1.16 Contenido de nutrientes e instrucciones 

de mezclado de la etiqueta de un fertilizante comercial 

típico (20-7-19). 

Nutriente Análisis 

garantizado (%) 

Nitrógeno total (N) 20.0 

Nitrato 11.6 

Amonio 7.0 

Urea 1.4 

Ácido fosfórico disponible 

(P2O5) 

7.0 

Potasio soluble (K2O) 19 

Cantidad de fertilizante para hacer el 

concentrado 

100 ppm N 150 ppm N 

Tasa del 

inyector 

g/l oz/gal g/l oz/gal 

1:100 50.1 6.68 75.1 10.01 

1:200 100.2 13.35 150.2 20.03 

Cuadro 4.1.17 Tablas para determinar la cantidad de fertilizante comercial a agregar por galón de agua, para diferentes 

concentraciones de nitrógeno (N) y tasas de inyección de nutrientes. 

Cantidad de fertilizante a agregar a 3.78 litros (1 galón) de agua 

Tasa del 100 ppm 150 ppm 200ppm 

Inyector g oz g oz g oz 

30% de fertilizante nitrogenado (por ejemplo, 30-10-10) 

1:300 382.7 13.5 574.1 20.2 765.5 27.0 

1:200 255.2 9.0 382.7 13.5 510.3 18.0 

1:100 127.6 4.5 191.4 6.8 255.2 9.0 

1:50 63.8 2.2 95.7 3.4 127.6 4.5 

1:15 19.1 0.7 28.7 1.0 38.3 1.4 

25% de fertilizante nitrogenado (por ejemplo, 25-10-10) 

1:300 476.8 16.5 701.7 24.8 935.6 33.0 

1:200 311.8 11.0 467.8 16.5 623.7 22.0 

1:100 155.9 5.5 23.9 8.2 311.8 11.0 

1:50 78.0 2.8 116.9 4.1 155.9 5.5 

1:15 23.4 0.8 35.1 1.2 46.8 1.6 

20% de fertilizante nitrogenado (por ejemplo, 20-20-20) 

1:300 574.1 20.2 861.1 30.4 1,148.2 40.5 

1:200 382.7 13.5 574.1 20.2 765.4 27.0 

1:100 191.4 6.8 287.0 10.1 382.7 13.5 

1:50 95.7 3.4 143.7 5.1 191.4 6.8 

1:15 28.6 1.0 43.0 1.5 57.4 2.0 

15% de fertilizante nitrogenado (por ejemplo, 15-15-15) 

1:300 765.4 27.0 1,148.2 40.5 1,530.9 54.0 

1:200 510.3 18.0 765.4 27.0 1,020.6 36.0 

1:100 255.2 9.0 382.7 13.5 510.3 18.0 

1:50 127.6 4.5 191.4 6.8 255.2 9.0 

1:15 38.3 1.4 57.4 2.0 76.5 2.7 

Fuente: modificado de Ball (1985). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

40

Varios fertilizantes solubles con micronutrientes 

están disponibles tanto como elementos simples o 

como mezclas de micronutrientes; las mezclas son 

más recomendables que los fertilizantes con 

micronutrientes individuales, a menos que se haya 

identificado una deficiencia específica. La 

sobrefertilización con un producto de un solo 

elemento, puede resultar en toxicidad directa, o en 

un desbalance nutricional que puede inhibir la 

absorción de otros micronutrientes. El Micromax ®, 

es una mezcla basada en sulfato, la cual 

generalmente se incorpora al sustrato, pero 

también puede aplicarse en aspersión 

impregnando al follaje, siempre y cuando, este sea 

enjuagado inmediatamente después de la 

aplicación (Whitcomb, 1984). Las mezclas solubles 

con elementos menores (S.T.E.M.®), incluyen 

azufre y seis microelementos que son derivados de 

sulfatos y otros productos inorgánicos. Muchos 

especialistas en nutrición vegetal, consideran que 

las formas quelatadas de micronutrientes se 

mantienen más disponibles en el sustrato; una 

mezcla de micronutrientes quelatados solubles 

(Compound 111®), está disponible para ser usada 

en sistemas de inyección. También están 

disponibles varias formulaciones comerciales de 

micronutrientes individuales quelatados, tales como 

el "Sequestrene 330 Fe ®" (quelato EDTA), y el 

"Sequestrene 138 Fe ®" (quelato EDDHA). 

Las tasas de aplicación se proporcionan en la 

etiqueta del fertilizante, usualmente especificadas 

como la cantidad de micronutrientes a utilizar por 

cantidad de macronutrientes (los fertilizantes con 

micronutrimentos, también se discuten en la 

sección 4.1.4.3). 

4.1.7.4 Cálculos de fertilizante para las mezclas 

hechizas. 

Selección de productos químicos. Las mezclas 

de fertilizantes hechizas o tradicionales, utilizan 

productos químicos para proporcionar los 

nutrientes minerales necesarios para el cultivo de 

las plantas. Existen varios grados de productos 

químicos, los cuales están clasificados según su 

uso (cuadro 4.1.18); los grados técnicos o 

purificados, resultan más prácticos para las 

mezclas de fertilizantes hechizos, en términos de 

pureza y costo. Los productos químicos con grado 

de fertilizante no son recomendables para las 

mezclas de fertilizante soluble, puesto que 

contienen un porcentaje relativamente elevado de 

impurezas. La Encuesta de Viveros que Producen 

en Contenedor, encontró que el 12% de estos 

utilizaron mezclas hechizas exclusivamente, y que 

otro 6% los usó en combinación con fertilizantes 

comerciales. 

Los productos químicos específicos para elaborar 

las mezclas de fertilizante hechizo, son 

seleccionadas con base en los siguientes criterios: 

1. Disponibilidad y capacidad de proporcionar el 

nutriente deseado. Los productos químicos 

solubles comúnmente disponibles, adecuados 

para su uso como fertilizantes, son referidos en 

el cuadro 4.1.19; note que algunos nutrientes 

como el N, están disponibles en varios 

compuestos solubles, mientras que otros, como 

es el Ca, solamente cuentan con una forma 

soluble. 

2. Solubilidad en agua y compatibilidad con otros 

productos químicos nutricionales. La 

solubilidad y compatibilidad de algunos de los 

principales productos químicos fertilizantes, 

son comparados en la figura 4.1.22 . 

3. Costo por nutriente proporcionado. Varios 

productos químicos contienen más de un 

nutriente, son por tanto más eficientes en 

cuanto a costo, y contienen pocos iones no 

deseables. Sin embargo, las sustancias 

químicas con múltiples nutrientes hacen un 

poco más complicados los cálculos de 

fertilizante, a causa de la necesidad de 

mantener el balance de los otros nutrientes. 

4. Ausencia de iones potencialmente tóxicos. 

Algunas sustancias químicas comúnmente 

empleadas, contienen iones secundarios 

indeseables, además de los iones nutriente, 

Un buen ejemplo de esto es el KCl, el cual 

contiene 47% de Cl; a causa de la elevada 

concentración de K+

 deseable en las 

soluciones fertilizante, los iones Clacompañantes podrían resultar tóxicos. 

Mezclando las soluciones de fertilizante. Las 

sustancias químicas son disueltas en agua para 

formar soluciones de nutrientes. Es una buena 

idea usar agua caliente para las soluciones, ya que 

la mayoría de las sustancias se disuelven más 

rápida y completamente en ésta. Mastalerz (1977), 

recomienda preparar la solución en un contenedor 

con agua caliente, y entonces extraerla con sifón o 

verterla dentro de otro contenedor, para que las 

partículas no disueltas sean separadas. Las 

soluciones son muy corrosivas, por lo que debe 

contarse con tanques plásticos, y no metálicos, con 

cubiertas para mantenerlas sin basura. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

41

Cuadro 4.1.18 Clases comerciales de químicos empleadas en fertilizantes hechizos. 

Símbolo Clase de 

sustancia 

Definición y uso Costo relativo del nitrato 

de amonio (US$) 

AR/ACS Reactivo Uso general en laboratorios 14.45/lb 

U.S.P. Farmacéutico Clase farmacéutico -- 

TAC/FCC Alimento Satisfactorio para usos alimenticios aprobados -- 

Purificado Purificado De mayor calidad que el técnico 12.97/lb 

Técnico Técnico Clase conveniente para uso industrial general; muy 

pocas impurezas; mejor para mezclas de fertilizante 

hechizo

0.21/lb 

Fertilizante Fertilizante De menor calidad que el técnico; puede contener 

impurezas 

0.16/lb 

Cuadro 4.1.19 Características de los macronutrientes e implicaciones para la formulación de fertilizantes líquidos. 

Nutriente Formas de 

absorción 

iónica 

Movilidad 

en la 

planta 

Efectos en el crecimiento de la planta Disponibilidad como 

fertilizante soluble 

Nitrógeno NO3

-

NH4

+ Alta 

Alta 

Elemento Fertilizante usado en grandes 

Cantidades. Los niveles elevados de N 

promueven una rápida división y elongación 

celular, aunque puede prolongar la suculencia. 

Excelente (7 formas): 

Nitrato de Amonio 

Fosfatos de amonio 

Sulfato de amonio 

Nitrato de calcio 

Nitrato de potasio 

Nitrato de sodio* 

Urea 

Fósforo H2PO4

-

HPO4

2- Alta 

Alta 

Aunque el P se halla en cantidades menores en 

el tejido vegetal, son necesarias cantidades 

relativamente grandes en la estación temprana 

de crecimiento para el establecimiento y el 

crecimiento de la raíz. 

Razonable 

(2 formas): 

Fosfatos de amonio 

Ácido fosfórico 

Potasio K+ Alta Usado en grandes cantidades durante toda la 

etapa de cultivo. Se piensa que promueve la 

lignificación del tallo y la resistencia al frío. 

Buena 

(4 formas): 

Carbonato de potasio 

Cloruro de potasio* 

Nitrato de potasio 

Sulfato de potasio 

Calcio Ca2+ Bajo Importante en la estación temprana del cultivo, 

para el crecimiento radical. El Ca es el 

componente principal de la pared celular, y por 

ende promueve la firmeza de los tejidos 

durante el endurecimiento. 

Pobre 

(1 forma): 

Nitrato de calcio 

Magnesio Mg2+ Medio Es componente estructural de la clorofila, y es 

requerido en cantidades moderadas. 

Pobre 

(1 forma): 

Sulfato de magnesio 

Azufre SO4

2- Medio Esencial para las proteínas, es necesario en 

cantidades moderadas durante la etapa de 

cultivo 

Buena 

(4 formas): 

Sulfato de amonio 

Sulfato de magnesio 

Sulfato de potasio 

Ácido sulfúrico 

*No recomendable, a causa del elevado índice de sales.
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Volumen 4: Fertilización y Riego

42

Por seguridad propia, siempre agregue primero 

el componente ácido a la solución. Ciertos 

nutrientes, especialmente el Ca y el Mg, causan 

problemas en las soluciones concentradas porque 

forman precipitados con otros nutrientes, como los 

sulfatos o los fosfatos: Ca + SO4 = CaSO4 (yeso) 

(fig. 4.1.23). Con frecuencia son usadas tres 

soluciones separadas para proporcionar todos los 

nutrientes, mientras se mantiene la solubilidad 

óptima de las sustancias en cada solución. 

Observe que el Ca es agregado en la solución de 

micronutrientes porque éste formará precipitados 

con el P o con el SO4 en la solución de 

macronutrientes: 

Figura 4.1.23 La incompatibilidad química entre ciertos 

iones de nutrientes minerales, en este caso calcio y 

sulfato, puede originar precipitados insolubles en las 

soluciones de fertilizante (Ca2+ + SO4

2- = CaSO4, o sea 

yeso). 

Solución 1 (S#1). Ácido diluido. Reduce el pH del 

agua de riego y, si se emplea ácido fosfórico, 

proporciona P. 

Solución 2 (S#2). Macronutrientes excepto Ca. 

Proporciona todos éstos, excepto el Ca, el cual 

debe ser suministrado en la S#3, por razones de 

solubilidad. 

Solución 3 (S#3). Micronutrientes más Ca. 

Proporciona todos los micronutrientes y el Ca. 

En este ejemplo, la solución de fertilizante 

completa consistirá de la solución #2 y de la 

solución #3, cada una inyectada a través de su 

propia cabeza inyectora. Varios inyectores de 

fertilizantes están disponibles con dos cabezas, y 

pueden ser solicitados con diferentes tasas de 

inyección. Las soluciones de macronutrientes 

usualmente son inyectadas a tasas de 1:200, 

mientras que las soluciones con micronutrientes 

pueden ser más concentradas, e inyectadas a 

tasas tan elevadas como 1:500. 

Ejemplo de cálculos. El ejemplo siguiente, fue 

diseñado para el agua de riego del Vivero del 

Estado de Colorado, utilizando una modificación 

del procedimiento de Tinus y McDonald (1979). El 

vivero usa un inyector Smith®

, con dos cabezas 

1:200, y tanques de solución con 200 litros (50 

galones) de capacidad: 

S#1 (ácido diluido). Debido a que el agua de 

riego de muchos viveros tiene pH neutro a 

ligeramente alcalino, esta solución puede ser 

inyectada con cualquier agua de riego para reducir 

el pH hasta 5.5, el nivel ideal para el cultivo de 

coníferas. El constante riego ácido puede 

mantener el pH bajo del medio de crecimiento 

durante la germinación de la semilla, ayudando 

entonces a reducir la ocurrencia de enfermedades 

como la “chupadera” (“damping-off”). El ácido 

fosfórico, comúnmente es utilizado para reducir el 

pH del agua de riego porque éste proporciona una 

fuente constante de P, el cual es benéfico durante 

el crecimiento inicial de las plántulas, antes de que 

sea iniciada la fertilización formal. Si el agua de 

riego es muy alcalina, a veces es empleado un 

ácido más fuerte, como el ácido sulfúrico, además 

del ácido fosfórico. El uso de esta solución ácida 

con cada riego, también previene la formación de 

los depósitos calcáreos en las boquillas de riego, 

en áreas con agua "dura". 

La cantidad apropiada de ácido a utilizar, está 

determinada por una titulación ácida del agua de 

riego del invernadero, usando ácido fosfórico o 

ácido sulfúrico (ver sección 4.1.7.2). Con base en 

el promedio de tres titulaciones separadas, con 1% 

H3PO4, 3.2 ml de ácido al 1%, redujeron el pH de 1 

litro de agua de riego a 5.5 (fig. 4.1.21). Utilizando 

H3PO4 comercial al 85%, tomará 1/85 del ácido 

concentrado para tratar 1 litro del agua del 

invernadero: 

3.2 ml / 85 = 0.0376 ml de H3PO4 al 85% por 

litro de agua. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

43

Figura 4.1.22 Ciertas sustancias que son usadas para la formulación de fertilizantes líquidos habituales, son incompatibles 

en las soluciones concentradas de fertilizante. Este gráfico de compatibilidad ilustra algunas de las combinaciones químicas 

que deberán ser evitadas en la misma solución (modificado de Soil and Plant Laboratory Inc., Bellevue, WA). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

44

Si 0.0376 ml son requeridos para 1 litro de agua, 

¿qué tanto (X) será necesitado para 200 litros de 

solución? 

(0.0376 ml) / 1 litro = (X ml) / 200 litros 

X = 7.52 ml de H3PO4 al 85% 

La solución será inyectada a una tasa de 1:200, 

entonces la solución debe ser 200 veces más 

fuerte: 

7.52 ml x 200 = 1,504 ml = 1.5 litros de 

H3PO4 al 85% 

A la receta de la S#1, entonces, le serán 

agregados 1.5 litros de H3PO4 al 85%, a suficiente 

agua de riego para completar 200 litros de la 

solución. 

La precisión de estos cálculos deberá ser verificada 

mediante el muestreo del agua de riego, para 

probar su pH (una medición directa de pH de la 

solución, no es indicativa del pH del agua de riego 

que se aplicará). Debido a que la calidad del agua 

de riego cambiará durante el año, la cantidad de 

ácido adicionada a la solución puede ser ajustada 

ocasionalmente. 

S#2 (macronutrientes excepto Ca). Los cálculos 

para esta solución de fertilizante son 

proporcionados en el cuadro 4.1.20A (se 

proporciona una forma en blanco en el cuadro 

4.1.20B). La porción superior muestra las 

concentraciones nutrimentales óptimas, en partes 

por millón, la cantidad de cada nutriente en el agua 

de riego, y la cantidad requerida para ser agregada 

como fertilizante inyectado. Las sustancias 

químicas usadas para proporcionar los nutrientes y 

su contribución, en partes por millón, se muestran 

en la columna izquierda. La columna final de la 

derecha, muestra la cantidad total de sustancia 

química que debe estar presente en la solución de 

fertilizante que será aplicada, conforme ésta sale 

de la boquilla de riego. 

Las partes por millón totales de cada nutriente, 

deben ser convertidas al peso de la sustancia 

química que necesita ser agregada para cada litro 

de agua. Esta conversión es simple, porque 1 litro 

de agua pesa 1 kg, por definición. Por tanto, sobre 

una base de peso por volumen, 1 mg/l es igual a 1 

ppm. 

Con base en la titulación ácida, 0.0376 ml de 

H3PO4 al 85% serán agregados a 1 litro de agua de 

riego. Para calcular la cantidad de P agregado, 

véase el cuadro 4.1.21, el cual muestra que 1 litro 

de H3PO4 al 85% pesa 1,436 g (si usase H2SO4, 

entonces emplee los datos químicos del cuadro 

4.1.22). Si 1 litro de H3PO4 pesa 1,436 g, ¿qué 

tanto pesarán 0.0376 ml? 

1 000 ml / 1,436 g = 0.0376 ml / X g 

X = 0.054 g = 54 mg 

El siguiente paso es convertir el H3PO4 al 85% a 

partes por millón de P, y el cuadro 4.1.23 muestra 

que el ácido fosfórico contiene 32% de P. 

Entonces: 

54 mg/l = 54 ppm x 0.32 = 17 ppm de P 

Nuestra concentración objetivo es 60 ppm de P, 

entonces necesitamos agregar más P. El fosfato 

monopotásico (KH2PO4), puede ser usado para 

proporcionar tanto P como K, y el cuadro 4.1.23 

muestra que la sustancia contiene 23% de P y 28% 

de K. Nosotros necesitamos 43 ppm para llegar al 

objetivo: 

43 ppm P / 0.23 = 187 mg/l KH2PO4

187 mg/l x 0.28 = 52 ppm K 

El nitrato de potasio (KNO3) contiene 13% de NO3, 

y 37% de K (cuadro 4.1.23), así que puede ser 

usado para proporcionar 48 ppm de K para 

alcanzar el objetivo de 100 ppm: 

48 ppm K / 0.37 = 130 mg/l x KNO3

130 mg/l x 0.13 = 17 ppm NO3

El nitrato de amonio (NH4NO3) proporciona 17% de 

NO3, y 17% de NH4 (cuadro 4.1.23), entonces 

nosotros podemos usar esta sustancia para llenar 

los requerimientos de NH4 y parte de los 

requerimientos de NO3: 

60 ppm NH4 / 0.17 = 353 mg/l NH4NO3

353 mg/l x 0.17 = 60 ppm NO3

Nosotros aún requerimos 63 ppm de NO3 para 

hacer nuestra concentración objetivo (cuadro 

4.1.20A). El nitrato de calcio (CaNO3), el cual 

contiene 15% de NO3 y 17% de Ca (cuadro 4.1.23), 

representa la elección lógica: 

63 ppm NO3 / 0.15 = 420 mg/l CaNO3

420 mg/l x 0.17 = 71 ppm Ca 

Esto completa el requerimiento de 200 ppm de N, y 

las 71 ppm de Ca están muy cercanas al objetivo 

de 69 ppm (cuadro 4.1.20A). Los únicos dos 

nutrientes que aún se necesitan para agregarse 

son el Mg y el S, los cuales pueden ser 

adicionados con una sustancia, el sulfato de 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

45

magnesio (MgSO4), sales Epsom ordinarias. El 

MgSO4, contiene 13% de S y 10% de Mg (cuadro 

4.1.23). Nosotros requerimos 38 ppm de Mg: 

38 ppm Mg / 0.10 = 380 mg/l de MgSO4

380 mg/l x 0.13 = 49 ppm de S 

La adición de MgSO4, completa la fórmula nutritiva, 

puesto que las concentraciones de todos los 

nutrientes en la hilera "totales", se apega 

razonablemente a las concentraciones objetivo 

(cuadro 4.1.20A). 

La receta para todos los ingredientes es dada en la 

columna "solución aplicada", en el cuadro 4.1.20A; 

esta es la concentración real de fertilizante que es 

aplicada a las plantas. Estos valores son llevados 

abajo, a la columna de "solución aplicada", en la 

base del cuadro, donde son hechas las 

conversiones para el inyector de nutrimentos, y 

para la solución. El ajuste para el inyector de 

fertilizante (1:200), consiste en multiplicar los 

valores de la solución aplicada por 200, y entonces 

convertir miligramos a gramos. Los cálculos para 

el MgSO4 servirán como ejemplo: 

380 mg/l x 200 = 76 000 mg/l = 76 g/l 

El paso siguiente involucra nuevamente el 

multiplicar por 200, para calcular qué tanta 

sustancia química se necesita para los tanques de 

solución de 200 litros, y para convertir a 

kilogramos: 

76 g/l x 200 = 15,200 g = 15.2 Kg 

Recuerde que el CaNO3 no será agregado a esta 

solución (debido a problemas de solubilidad), pero 

sí a la solución con micronutrientes (S#3). 

S#3 (micronutrientes más Ca). Los cálculos para 

esta solución, son en esencia los mismos que para 

la S#2, usando la información del cuadro 4.1.24, 

para determinar la cantidad de nutrientes que cada 

sustancia química provee. Las formas quelatadas 

de micronutrientes metálicos (Fe, Mn, Cu y Zn), 

son más caras que las formas sulfato, pero se 

considera que están más disponibles bajo un 

intervalo de condiciones de suelo. Sin embargo, 

cuando se utiliza el medio de crecimiento de turbavermiculita, la disponibilidad de micronutrientes no 

deberá representar un problema. 

Las recetas finales para las tres soluciones, son 

proporcionadas en el cuadro 4.1.25, el cual 

muestra la cantidad de cada una de las sustancias 

químicas que deberá ser agregada para elaborar 

200 litros de solución.
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Volumen 4: Fertilización y Riego

46

Cuadro 4.1.20A Muestra de cálculos para una mezcla de fertilizante hechiza. 
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47

Cuadro 4.1.20B Forma en blanco para calcular mezclas de fertilizante hechizo. 
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48

Cuadro 4.1.21 Ácido fosfórico: relación entre grados 

Baume (Be), porcentaje del ácido y gramos de ácido por 

litro (g/l) 

Be Gravedad 

específic

a 

Porciento 

de ácido 

Concentració

n del ácido 

(g/l) 

0.6 1.0038 1 10.04 

1.3 1.0092 2 20.18 

2.8 1.0200 4 40.80 

4.3 1.0309 6 61.85 

5.8 1.0420 8 83.36 

7.3 1.0532 10 105.3 

8.8 1.0647 12 127.8 

10.3 1.0764 14 150.7 

11.8 1.0884 16 174.1 

13.3 1.1008 18 198.1 

14.8 1.1134 20 222.7 

16.3 1.1263 22 247.8 

17.8 1.1395 24 273.5 

19.2 1.1529 26 299.8 

20.7 1.1665 28 326.6 

22.2 1.1805 30 354.2 

25.8 1.2160 35 425.6 

29.4 1.2540 40 501.6 

32.9 1.2930 45 581.9 

36.4 1.3350 50 667.5 

39.9 1.3790 55 758.5 

43.3 1.4260 60 855.6 

46.7 1.4750 65 958.8 

50.0 1.5260 70 1,068 

53.2 1.5790 75 1,184 

56.2 1.6330 80 1,306 

59.2 1.6890 85 1,436 

62.0 1.7460 90 1,571 

63.1 1.7700 92 1,628 

64.2 1.7940 94 1,686 

65.3 1.8190 96 1,746 

66.4 1.8440 98 1,807 

67.5 1.8700 100 1,870 

Fuente: Hodgman et al. (1953). 

Cuadro 4.1.22 Ácido sulfúrico: relación entre grados 

Baume (Be), porciento de ácido, y concentración del 

ácido (g/l). 

Be Gravedad 

específic

a 

Porciento 

de ácido 

Concentració

n del ácido 

(g/l) 

44.7 1.4453 55 749.9 

45.4 1.4557 56 815.2 

46.1 1.4662 57 835.7 

46.8 1.4768 58 856.5 

47.5 1.4875 59 877.6 

48.2 1.4983 60 899.0 

48.9 1.5091 61 920.6 

49.6 1.5200 62 942.4 

50.3 1.5310 63 964.5 

51.0 1.5421 64 986.9 

51.7 1.5533 65 1,010 

52.3 1.5646 66 1,033 

53.0 1.5760 67 1,056 

53.7 1.5874 68 1,079 

54.3 1.5989 69 1,103 

55.0 1.6105 70 1,127 

55.6 1.6221 71 1,152 

56.3 1.6338 72 1,176 

56.9 1.6456 73 1,201 

57.5 1.6574 74 1,226 

58.1 1.6692 75 1,252 

58.7 1.6810 76 1,278 

59.3 1.6927 77 1,303 

59.9 1.7043 78 1,329 

60.5 1.7158 79 1,355 

61.1 1.7272 80 1,382 

61.6 1.7383 81 1,408 

62.1 1.7491 82 1,434 

62.6 1.7594 83 1,460 

63.0 1.7693 84 1,486 

63.5 1.7786 85 1,512 

63.9 1.7872 86 1,537 

64.2 1.7951 87 1,562 

64.5 1.8022 88 1,586 

64.8 1.8087 89 1,610 

65.1 1.8144 90 1,633 

65.3 1.8195 91 1,656 

65.5 1.8240 92 1,678 

65.7 1.8279 93 1,700 

65.8 1.8312 94 1,721 

65.9 1.8337 95 1,742 

66.0 1.8355 96 1,762 

66.0 1.8364 97 1,781 

66.0 1.8361 98 1,799 

65.9 1.8342 99 1,816 

65.8 1.8305 100 1,831 

Fuente: Hodgman et al. (1953). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

49

Cuadro 4.1.23 Sustancias químicas fertilizantes solubles que proporcionan macronutrientes para soluciones fertilizantes 

hechizas. 

Compuesto Fórmula 

Solubilida

d en agua 

% de nutriente proporcionado 

Química (g/100 ml) NH4-N NO3-N P K Ca Mg S 

Nitrato de amonio NH4NO3 118 17 17 -- -- -- -- -- 

Sulfato de amonio (NH4)2SO4 71 21 -- -- -- -- -- 24 

Nitrato de calcio Ca(NO3)2 102 -- 15 -- -- 17 -- -- 

Fosfato diamónico (NH4)2HPO4 43 21 -- 24 -- -- -- -- 

Fosfato dipotásico K2HPO4 167 -- -- 18 45 -- -- -- 

Sulfato de magnesio MgSO4 71 -- -- -- -- -- 10 13 

Fosfato monoamónico NH4H2PO4 23 11 -- 21 -- 1 -- 3 

Fosfato monopotásico KH2PO4 33 -- -- 23 28 -- -- -- 

Ácido nítrico HNO3 ND -- 22 -- -- -- -- -- 

Ácido fosfórico H3PO4 548 -- -- 32 -- -- -- -- 

Carbonato de potasio K2CO3 112 -- -- -- 56 -- -- -- 

Cloruro de potasio KCl 35 -- -- -- 52 -- -- -- 

Nitrato de potasio KNO3 13 -- 13 -- 37 -- -- -- 

Sulfato de potasio K2SO4 7 -- -- -- 44 -- -- 18 

Nitrato de sodio NaNO3 73 -- 16 -- -- -- -- -- 

Ácido sulfúrico H2SO4 ND -- -- -- -- -- -- 33 

Urea CO(NH2)2 78 45 -- -- -- -- -- -- 

ND = no disponible. 

Cuadro 4.1.24 Sustancias fertilizantes solubles que proporcionan micronutrientes para soluciones fertilizantes hechizas. 

Nutriente Compuesto Notación química* % de 

micronutrientes 

Hierro (Fe) Sulfato ferroso 

Sulfato férrico 

Quelatos con hierro 

FeSO4-7H20 

(Fe)2(SO4)3-4H20 

NaFeAEDT 

NaFeAHEDT 

NaFeAEDDH 

19 

23 

5-14 

6 

10 

Manganeso (Mn) Cloruro de manganeso 

Sulfato de manganeso 

Quelatos con manganeso 

MnCl2

MnSO4-3H2O 

MnAEDT 

17 

27 

12 

Zinc (Zn) Sulfato de zinc 

Quelatos con zinc 

ZnSO4-H20 

Na2ZnAEDT 

NaZnAHEDT 

35 

14 

9 

Cobre(Cu) Sulfato de cobre 

Sulfatos básicos de cobre 

Quelatos con cobre 

CuSO4-H2O 

CuSO4-3Cu(OH)2

Na2CuAEDT 

NaCuAHEDT 

35 

13 – 53 

13 

9 

Boro(B) Bórax 

Acido bórico 

Solubor 

Na2B4O7

H3BO3

B2O3 

11 

17 

20 

Molibdeno (Mo) Molibdato de sodio 

Molibdato de amonio 

Acido molibdénico 

Na2MoO4

(NH4)6Mo7O2-4H2O 

H2MoO4 

39 

54 

59 

Cloro (Cl) Cloruro de potasio KCl 48 

*AEDT = ácido etilendiaminotetraacético. 

AHEDT = ácido hidroxietiletilendiaminotriacético. 

AEDD = ácido etilendiaminodihidroxifenilacético. 

Fuente: modificado de Hanan et al. (1982). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

50

Cuadro 4.1.25 Recetas de soluciones (S) para mezclas hechizas de fertilizantes. 

Ingredientes Cantidad para hacer 200 litros de solución

S#1: Ácido fosfórico diluido 

Ácido fosfórico al 85% 1.5 l (1.6 cg*) 

S#2: Macronutrientes (sin Ca) 

Ácido fosfórico al 85% 

Fosfato monopotásico 

Nitrato de potasio 

Nitrato de amonio 

Sulfato de magnesio 

1.5 l (1.6 cg*) 

7.5 kg (16.5 lb) 

5.2 kg (11.5 lb) 

14.1 kg (31.1 lb) 

15.2 kg (33.5 lb) 

S#3: Micronutrientes (más Ca) 

Sequestrene 330® (quelato de Fe) 

Cloruro de potasio 

Ácido bórico 

Sulfato de manganeso 

Sulfato de Zinc 

Sulfato de cobre 

Molibdato de amonio 

Nitrato de calcio 

1.6 kg (3.5 lb) 

84.0 g (2.96 oz) 

24.0 g (0.85 oz) 

80.0 g (2.82 oz) 

2.0 g (0.07 oz) 

3.2 g (0.11 oz) 

0.8 g (0.03 oz) 

16.8 kg (37.0 lb) 

* Cuarto de galón 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

51

4.1.8 Programando y Aplicando la Solución de Fertilización 

4.1.8.1 Técnicas de aplicación. 

Una vez que las soluciones de fertilizante han sido 

preparadas, el paso siguiente es inyectarlas dentro 

del sistema de riego. Siempre es conveniente 

revolver la solución en los tanques cada vez de la 

inyección, para asegurar que todos las sustancias 

químicas están bien mezcladas. Si existe alguna 

cantidad excesiva de sedimento al fondo del 

contenedor (más de unos 5 centímetros), entonces 

la solución de fertilizante deberá ser reformulada, 

pues algunas sustancias químicas fertilizantes 

están reaccionando con los iones naturales Ca2+ y 

Mg2+, en el agua de riego, formando precipitados 

(fig. 4.1.23). 

Las aplicaciones de fertilizante líquido deberán 

programarse temprano, para dar tiempo que el 

follaje se seque antes de la caída de la noche, de 

modo que la posibilidad de enfermedades foliares 

como la pudrición por Botrytis se reduzca. La 

consideración clave en la aplicación de fertilizantes 

líquidos, es el aplicar suficiente cantidad de 

solución cada vez, para saturar completamente el 

sustrato, y para que fluya el exceso de sales 

fertilizantes. Mastalerz (1977), recomienda que se 

aplique un 10% más de la solución cada vez, para 

asegurar que la capacidad del contenedor sea 

cubierta, y para que la solución drene del 

contenedor. Dicho autor, cita una cifra de 20 litros 

de solución por metro cuadrado (0.5 galones por 

pie cuadrado) de espacio de las mesas de 

crecimiento en invernadero, para fertilizar 

apropiadamente un sustrato de aproximadamente 

15 cm (6 pulgadas) de profundidad. Carlson 

(1983), sugiere 1 litro (0.26 galones) de solución 

para 100 cavidades de 40 cm3

 (2.5 pulgadas 

cúbicas) de capacidad. Muchos viveristas tienen 

sus propios sistemas para regular la cantidad de 

solución fertilizante a aplicar, tal como el control del 

tiempo en que los aspersores se mantienen 

abiertos, especificando el número de veces que el 

chorro de riego pasa sobre las mesas, o limitando 

la cantidad de solución que es aplicada durante 

cada aplicación de fertilizante. 

El paso final en la inyección de fertilizante líquido, 

es un "enjuague con agua limpia", para lavar la 

solución de fertilizante del follaje, a efecto de 

prevenir posibles "quemaduras". Esto es 

particularmente importante con ciertos fertilizantes, 

como es el cloruro de potasio (KCl), el cual tiene 

una elevada potencialidad de formar sales (ver 

cuadro 4.1.5). La duración de este enjuague 

variará con el tamaño de las plantas, pero 

usualmente toma sólo de 15 a 20 segundos 

(Carlson, 1983). 

4.1.8.2 Momento para la primera fertilización. 

Tradicionalmente, los viveristas retrasan la primera 

aplicación de fertilizante hasta que la plántula 

recién germinada se ha establecido, usualmente 

cuando la testa es tirada de los cotiledones de las 

plántulas de coníferas (de 4 a 8 semanas después 

de la siembra). Las razones dadas para este 

retardo en la fertilización, es que los hongos que 

originan la “chupadera” son estimulados por el 

fertilizante (Tinus y McDonald, 1979), o bien que la 

solución de fertilizante concentrado puede 

"quemar" a las plántulas suculentas en 

germinación. Sin embargo, si se utiliza un buen 

sustrato y un apropiado procedimiento fitosanitario, 

la “chupadera” no debería representar un problema 

serio en los viveros forestales que producen en 

contenedor, y la quemadura por fertilizantes no 

debería ser un problema si los fertilizantes son 

enjuagados de la plántula con prontitud. 

Algunos especialistas de viveros consideran que la 

fertilización temprana no es necesaria, porque el 

endospermo (nota del traductor: o el gametofito 

femenino, en el caso de coníferas) contiene 

nutrientes suficientes para el establecimiento y el 

crecimiento inicial. Carlson (1983), establece que 

las plántulas recién germinadas comienzan a tomar 

pocos elementos minerales hasta 10 o 14 días 

después de la germinación. Sin embargo, Barnett 

y Brissette (1986), reportan que un retraso en la 

fertilización inicial puede tener un efecto 

considerable en el desarrollo: un retraso de 3 

semanas puede disminuir en un 20% el peso 

anhidro de las plantas de Pinus taeda (loblolly 

pine). (fig. 4.1.24). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

52

Figura 4.1.24 El retraso en la aplicación inicial de 

fertilizante líquido, originó una sustancial pérdida de 

crecimiento en plantas de Pinus taeda (loblolly pine) 

(modificado de Barnett y Brissette, 1986). 

Muchos viveristas incorporan una pequeña 

cantidad de fertilizante sólido o fertilizante 

"iniciador" de liberación lenta en el sustrato, para 

aprovisionar a la plántula recién germinada hasta 

que sean aplicados los fertilizantes líquidos. Brix y 

van den Driessche (1974), han reportado que las 

plantas producidas en contenedor, durante las 

primeras semanas, podrían ser ayudadas con la 

incorporación de fertilizante de liberación lenta 

dentro del sustrato. Edwards y Huber (1982), 

establecen que algunos viveristas de las provincias 

con praderas de Canadá, comienzan aplicando 

formulaciones de fertilizante líquido con elevado P, 

una semana después de la siembra, para estimular 

el desarrollo radicular. Etter (1971), encontró que, 

aunque los niveles elevados de N o P no pueden 

incrementar el crecimiento de la raíz en Picea 

glauca, (white spruce) durante las primeras seis 

semanas de crecimiento, un programa de 

fertilización empleando de 50 a 60 ppm de N 

produjo incrementos significativos en el peso 

anhidro foliar y en el peso total de la planta. 

Las observaciones hechas por Barnett y Brissette 

(1986), indicaron que la determinación del 

momento de aplicación de la fertilización inicial, 

debería ser reevaluada, y que la práctica del 

fertilizante iniciador puede ser meritoria (fig. 

4.1.24). La aplicación de fertilizante líquido diluido 

durante el periodo de germinación y de 

emergencia, puede estimular el crecimiento sin 

fuertes daños por los efectos de orilla. La 

fertilización temprana, debería ser primeramente 

establecida a pequeña escala, como cualquier 

cambio en prácticas de cultivo, para apreciar si 

resultará conveniente a gran escala. 

4.1.8.3 Programando las aplicaciones de 

fertilizante durante la etapa de cultivo. 

Existen dos formas básicas para aplicar 

fertilizantes líquidos: la fertilización constante, y la 

fertilización periódica. La aplicación de una 

solución fertilizante diluida cada vez que el cultivo 

es regado, es conocida como fertilización constante 

(Mastalerz, 1977); la concentración de esta 

solución fertilizante aplicada, es exactamente la 

concentración de nutrientes deseada en la solución 

del medio de crecimiento. La fertilización periódica, 

consiste en la aplicación de una solución fertilizante 

más concentrada, acorde con una programación 

prefijada, tal como una vez a la semana, o cada 

tercer riego. La solución fertilizante aplicada 

durante la fertilización periódica, puede por tanto 

ser varias veces más concentrada que la solución 

fertilizante constante, que es la misma que los 

niveles de nutrientes deseados en la solución del 

medio de crecimiento. Un ejemplo de 

programación de fertilización periódica se 

proporciona en el cuadro 4.1.26. La encuesta de 

viveros que producen en contenedores, reveló que 

en el 64% de los viveros se utiliza fertilización 

periódica, que en 25% de éstos se prefiere la 

fertilización constante, y que el 11% restante 

programa su fertilización con base en el 

seguimiento del desarrollo del cultivo, o en los 

niveles de nutrientes del sustrato. 

Cuadro 4.1.26 Programación de una aplicación 

periódica de fertilizantes líquidos, para el vivero Coeur 

d'Alene, Idaho, del Servicio Forestal, Departamento de 

Agricultura de los Estados Unidos. 

Fase de 

cultivo de la 

planta 

Tiempo 

(semanas) 

Tipo de 

fertilizante 

Frecuencia 

de la 

fertilización 

Germinación 0-2 H3PO4 Cada tercer 

riego (1-2 por 

semana) 

Juvenil 3-4 7-40-17 Cada tercer 

riego 

Exponencial 5-10 20-7-19 Cada tercer 

riego 

Desarrollo de 

yema 

10-14 4-25-35 Cada tercer 

riego 

Dormición Antes del 

embarque 

20-7-19 Una vez 

Fuente: Myers (1987). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

53

En la figura 4.1.25 se muestra un punto de vista 

conceptual sobre los efectos de las fertilizaciones 

constante y periódica, en el nivel de nutrientes de 

la solución del medio de crecimiento, o en el follaje 

de la planta. Debido a que una solución de 

fertilizante más concentrada se aplica durante la 

fertilización periódica, el nivel de nutrientes en la 

solución del sustrato fluctuará más de lo que lo 

haría con la fertilización constante. Si esta 

fluctuación alcanza niveles extremos, el 

crecimiento de las plantas podría ser reducido a 

causa de las deficiencias de nutrientes o 

toxicidades. La fertilización constante mantiene las 

concentraciones de nutrientes en el sustrato más 

cerca de las concentraciones óptimas, las cuales 

deberán acelerar el crecimiento de las plantas. 

Gingrich (1984), establece que la fertilización 

periódica está perdiendo popularidad en los viveros 

que producen en contenedores, a causa de las 

grandes fluctuaciones en los niveles de nutrientes, 

y CE, en las soluciones de medio de crecimiento. 

La aplicación periódica de fertilizantes líquidos, es 

ampliamente practicada en los viveros forestales 

que producen en contenedor, y obviamente 

produce plantas aceptables. Sin embargo, esta 

práctica de cultivo deberá ser cuidadosamente 

supervisada, para evitar la formación de sales en la 

solución del medio de crecimiento (ver sección 

4.1.9), y los enjuagues del follaje siempre deberán 

seguir a la fertilización. Scarratt (1986), encontró 

que tanto la fertilización constante, como la 

periódica, produjeron buen crecimiento en las 

plantas, pero el nivel de humedad del sustrato fue 

cuidadosamente supervisado y, en su caso, 

lixiviado, para evitar formación de sales. 

Mullin y Hallett (1983), analizan las dos técnicas de 

aplicación de fertilizante, y enlistan las siguientes 

ventajas para la técnica de fertilización constante 

(reemplazamiento): 

1 El flujo regular del medio de crecimiento 

previene la formación de sales de fertilizante. 

2 Los nutrientes están uniformemente 

distribuidos a través del perfil del sustrato. 

3 Los niveles de nutrientes en la solución del 

medio de crecimiento deberán cambiarse 

rápidamente para corregir desbalances. 

Figura 4.1.25 Las aplicaciones periódicas de fertilizante líquido resultan en fluctuaciones más severas en los niveles de los 

nutrientes minerales del medio de crecimiento, en comparación con un programa de fertilización constante. A causa de que 

las aplicaciones periódicas contienen concentraciones relativamente mayores de fertilizante, la posibilidad de "quemado por 

fertilizante" es mayor (A). Por el otro lado, las deficiencias de nutrientes (B), pueden desarrollarse entre fertilizaciones. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

54

4 Los cultivos no pueden ser sobrefertilizados, 

porque la solución aplicada tiene exactamente 

la concentración apropiada para el crecimiento 

ideal. 

5 Los niveles nutricionales del sustrato son 

mantenidos a especificaciones objetivo con 

cada aplicación de fertilizante líquido. 

Las desventajas de la fertilización constante son: 

un ligero incremento en los costos en términos de 

sustancias químicas fertilizantes y de trabajo, y el 

problema de disposición de la solución de 

fertilizante percolada. Puesto que las numerosas 

ventajas superan las pocas desventajas, el 

procedimiento de fertilización constante es 

preferido usualmente para la aplicación de 

fertilizante líquido. 

La fertilización exponencial es una tercera forma de 

aplicar fertilizantes líquidos, la cual ha sido probada 

recientemente en viveros forestales que producen 

en contenedor. Esta consiste en iniciar con una 

baja tasa de fertilización, cuando las plántulas son 

pequeñas, e incrementar la cantidad de fertilizante, 

a una tasa exponencial, la cual es proporcional con 

el crecimiento de las plantas. Timmer y Armstrong 

(1987b), mostraron que la tasa de N que fue 

gradualmente incrementada de 5 a 125 ppm de N 

sobre el periodo de fertilización, produjo un mejor 

crecimiento de las plantas, particularmente de la 

raíz, en comparación con las técnicas 

convencionales de fertilización. La fertilización 

exponencial, tendrá otros beneficios operativos, tal 

como una menor probabilidad de formar sales en el 

sustrato, y una mayor eficiencia en el uso de 

fertilizante, en comparación con los métodos 

tradicionales de fertilización. Por cuanto toca a los 

inconvenientes, las programaciones de fertilización 

exponencial son más complicadas de calcular, y las 

aplicaciones serán más tardadas que las 

aplicaciones convencionales de fertilizante líquido 

(Timmer y Armstrong, 1987b). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

55

4.1.9 Supervisando la Fertilización 

Puesto que la apropiada nutrición mineral es tan 

importante para el cultivo de especies forestales, 

los viveristas deberán supervisar regularmente los 

niveles nutricionales en varias fases, durante la 

operación de fertilización, y los niveles de 

nutrientes en las mismas plantas. Los viveristas 

pueden revisar diferentes factores durante el 

procedimiento de fertilización (cuadro 4.1.27). 

4.1.9.1 Qué medir cuando se supervisa la 

fertilización. 

Los niveles de nutrientes minerales pueden 

supervisarse de mejor manera mediante la 

medición de la conductividad eléctrica (CE), y del 

pH de las diferentes soluciones fertilizantes, y a 

través de análisis químicos de las soluciones, para 

niveles de nutrientes específicos (cuadro 4.1.27). 

Conductividad eléctrica. La CE es una medida 

de la salinidad (nivel total de sales) de una 

solución, y por ende proporciona una indicación de 

las sales fertilizantes que están presentes. Un 

medidor de CE, mide la carga eléctrica llevada por 

los iones que están disueltos en una solución. 

Tanto más concentrados los iones, mayor la lectura 

(figura 4.1.26A). Los medidores de CE leen 

salinidad en unidades de conductancia 

denominadas mhos, o Siemens, que son unidades 

del sistema inglés. La mayoría de los instrumentos 

de prueba miden milimhos (1/1 000 mho), o 

micromhos (1/1 000 000 mho), y deben ser 

ajustados por temperatura de la solución. 

Siguiendo la convención del sistema inglés, las 

unidades de CE en el manual serán microSiemens 

por centímetro (μS/cm), que son equivalentes a 

micromhos por centímetro. 

Niveles de nutrientes minerales. Los análisis 

químicos de las soluciones nutritivas, pueden ser 

realizados por laboratorios o mediante estuches de 

prueba portátiles. Las pruebas de laboratorio son 

las más precisas, pero también las más tardadas y 

costosas. Varias compañías han desarrollado 

estuches de prueba para usos hortícolas, pero su 

uso requiere experiencia para hacer una buena 

interpretación. Los autores recomiendan que los 

viveristas utilicen servicios de prueba siempre que 

les sea posible, pues del costo de los análisis es 

relativamente pequeño cuando se compara con el 

valor del cultivo de las plantas. 

pH. La acidez relativa del agua de riego no tratada 

y de las soluciones de riego aplicadas, pueden ser 

revisadas con un medidor de pH (fig. 4.1.26B). El 

supervisar el pH de las soluciones fertilizantes, le 

podrá decir qué tan apropiadamente formuladas 

están las soluciones fertilizantes y qué tan bien 

esta funcionando el inyector de fertilizante, aunque 

esto es de poco valor para determinar los niveles 

de nutrientes minerales. El pH de la solución del 

medio de crecimiento cambia con la absorción de 

ciertos iones, como K+

, NH4

+

, y NO3

-

, la producción 

de dióxido de carbono por la respiración de la raíz, 

y la liberación de exudados de la raíz. 

Cuadro 4.1.2.7 Cinco etapas en el proceso de aplicación de fertilizante líquido, cuando la fertilización puede ser 

supervisada en los viveros forestales que producen en contenedor. 

Etapa Método de fertilización Índices de nutrición

Inyección de 

fertilizante líquido 

Incorporación 

de fertilizante 

sólido 

Conductividad 

eléctrica (CE) 

pH Nutrientes 

específicos 

1 Agua de riego SI SI X X X 

2 Solución fertilizante 

(aplicando dilución fuerte) 

SI NO X 

3 Solución de fertilizante 

aplicada 

SI NO X X X 

4 Solución del medio de 

crecimiento 

SI SI X X X 

5 Lixiviado SI SI X X 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

56

4.1.26A 

4.1.26B 

Figura 4.1.26 Cada vivero que produce en contenedor, 

deberá contar con cierto equipo de supervisión para el 

riego y la fertilización. Los medidores de conductividad 

eléctrica (A), pueden ser empleados para medir sales 

solubles, y el medidor de pH (B), puede ser usado para 

revisar el pH del agua de riego, y el de la solución 

fertilizante aplicada. 

4.1.9.2 Etapas a supervisar durante la 

fertilización. 

Los niveles de nutrientes minerales pueden ser 

supervisados en cinco pasos diferentes durante el 

proceso de fertilización, empezando con las sales 

nutritivas propias del agua de riego, y finalizando 

con la solución lixiviada que drena del fondo del 

contenedor (fig. 4.1.27). La técnica para supervisar 

la fertilización en viveros difiere, dependiendo de si 

se usa fertilizante sólido o fertilizante líquido 

inyectado. Los viveros que inyectan fertilizantes 

líquidos pueden supervisar el proceso de 

fertilización en las cinco etapas, mientras que 

aquellos que incorporan fertilizantes sólidos están 

restringidos a sólo tres de las cinco etapas (cuadro 

4.1.27). 

Agua de riego. El agua de riego deberá ser 

verificada en cuanto a la CE, concentraciones de 

nutrientes y pH; esto deberá realizarse durante los 

cálculos para la solución fertilizante inicial (ver 

sección 4.1.7.1). Los niveles de nutrientes 

minerales en el agua de riego, normalmente no 

cambiarán apreciablemente con el tiempo, pero la 

CE y el pH deberán ser medidos semanalmente 

(Los estándares de calidad del agua de riego son 

discutidos con más detalle en la sección 4.2.4.2). 

Solución de fertilizante dispoible. La eficiencia 

del inyector de fertilizantes puede ser verificada 

haciendo una dilución de la solución fertilizante y 

midiendo el nivel de CE (cuadro 4.1.27). Para un 

inyector 1:200, agregue una parte de la solución a 

200 partes del agua de riego; la lectura de CE de la 

solución fertilizante diluida, deberá ser 

aproximadamente la misma (dentro de un intervalo 

del 10%) que la CE de la solución fertilizante 

aplicada. Si la tasa real de inyección es 

consistentemente diferente que la tasa establecida, 

entonces las fórmulas de las soluciones deben ser 

recalculadas para la tasa real. Si la tasa de 

inyección medida varía excesivamente, entonces el 

inyector no está funcionando apropiadamente y 

puede necesitar de servicio. Los cambios erráticos 

en la presión de agua, a veces pueden causar un 

mal funcionamiento de los inyectores de 

fertilizantes; han de instalarse reguladores de 

presión de agua en la línea de alimentación para 

moderar los cambios en la presión. 

Solución de fertilizante aplicada. La solución 

fertilizante aplicada, es la más importante a 

verificar, porque esta solución entra en contacto 

con el follaje de las plantas, y penetra la zona de 

las raíces (fig. 4.1.27). La solución aplicada, es 

colectada directamente de la boquilla de riego (fig. 

4.1.28), y deberá verificarse en cuanto a CE, 

concentración de nutrimentos y pH (cuadro 4.1.27). 

La lectura de CE de la solución fertilizante aplicada, 

deberá ser aproximadamente igual a la suma de la 

salinidad base del agua de riego más las sales 

agregadas por la solución fertilizante. El pH de la 

solución aplicada deberá estar cercano al pH 

óptimo de 5.5, de lo contrario deberá ajustarse la 

cantidad de ácido agregada a la solución 

fertilizante. 

La concentración de nutrientes de la solución 

fertilizante aplicada, deberá ser determinada 

remitiendo una muestra a un laboratorio analítico, y 

tales valores deberán ser comparados con los 

valores objetivo. Como ejemplo, los resultados del 

vivero Mt Sopris (ver cuadro 4.1.14) muestran que, 

aunque la mayoría de los niveles de la solución 

aplicada están razonablemente cerca de los niveles 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

57

objetivo, los niveles de N-P-K son 

consistentemente bajos. Una verificación de la 

eficiencia del inyector, reveló que la tasa de 

inyección real, estaba cerca de 1:220, en lugar de 

1:200, lo cual explica la discrepancia. El nivel de 

SO4 es elevado en la solución aplicada, porque se 

agregó SO4 extra con el sulfato de amonio utilizado 

para proporcionar amonio. 

Solución del medio de crecimiento. Esta es la 

solución fertilizante que rodea al sistema radical de 

la planta en el contenedor (fig. 4.1.27), así que es 

una de las soluciones más importantes de revisar. 

La medición de la CE y el pH de la solución en el 

medio de crecimiento es esencial (cuadro 4.1.27), 

pues la solución del medio está en contacto 

inmediato con el sistema radical de la planta. La 

solución del medio de crecimiento será diferente 

químicamente a la solución fertilizante aplicada, 

porque los cationes del fertilizante son adsorbidos 

a diferentes tasas en los sitios de intercambio 

catiónico de las partículas del sustrato, y también 

son tomados a diferentes tasas por la planta. La 

composición química de esta solución determinará 

la salud general del sistema radical, y el tipo y tasa 

de absorción de nutrientes minerales. 

El nivel de los nutrientes minerales de la solución 

del medio de crecimiento, puede ser revisado por 

dos procedimientos diferentes: extractos del medio 

de crecimiento, o desplazamiento de la solución del 

medio de crecimiento. 

Extractos del medio de crecimiento. Estos 

extractos son preparados agregando cantidades 

específicas de agua o de una solución química 

extractiva a una muestra de sustrato, entonces se 

extrae y analiza químicamente la solución del 

medio de crecimiento. El procedimiento de 

extracción del medio saturado, consiste en agregar 

suficiente agua destilada a una muestra de sustrato 

(aproximadamente 500 cm3

), para alcanzar el 

punto de saturación; después de permitir a la 

suspensión equilibrarse durante un periodo de 

tiempo (aproximadamente 1.5 horas), la solución 

es extraída con un filtro de vacío, y es analizada 

químicamente (Warncke, 1986). 

Para superar la necesidad de obtener la solución 

del sustrato mediante un extracto de vacío, se 

pueden realizar otros procedimientos de prueba, 

como el hacer suspensiones del medio de 

crecimiento agregando una mayor cantidad de 

líquido a la muestra de sustrato. Nelson (1978), 

reporta estándares de diluciones 1:2 y 1:5 

(medio/agua), para supervisar la fertilidad del 

medio de crecimiento. Otros procedimientos, como 

el método "Spurway" (Markus, 1986), o el sistema 

Morgan (Mastalerz, 1977), utilizan extractantes 

químicos para estimar la concentración de 

nutrientes "intercambiables", contenidos en el 

medio de crecimiento. El problema con estas 

técnicas de dilución, es que las verdaderas 

características químicas de la solución del medio 

original con frecuencia son modificadas, pues las 

diluciones no forman relaciones lineales. 

Desplazamiento de la solución del medio de 

crecimiento. Este procedimiento consiste en el 

desplazamiento físico, y en el análisis químico de la 

solución real dentro del sustrato (Nelson y Faber, 

1986). Aunque las técnicas de desplazamiento de 

solución son consideradas las más representativas 

para los niveles de nutrientes minerales, en 

condiciones normales de humedad, éstas son 

técnicamente muy difíciles como para ser 

recomendadas en una supervisión rutinaria del 

vivero. La técnica de “verter a través de”, es un 

procedimiento modificado en el cual una cantidad 

específica de agua destilada es agregada a la 

superficie del sustrato; el lixiviado se colecta del 

fondo del contenedor y se analiza (Wright, 1986). 

La mayoría de las autoridades consideran que el 

procedimiento del extracto del medio saturado es el 

mejor, porque aparentemente está mejor 

correlacionado con el crecimiento de plantas en 

contenedor (Bilderback, 1986). Los estándares de 

CE para un sustrato de turba-vermiculita, usando 

este procedimiento, son dados en el cuadro 4.1.28. 

La salinidad de la solución del medio de 

crecimiento, refleja la carga de salinidad aplicada 

(agua de riego más fertilizante), más las sales 

acumuladas de fertilizantes no usados. Esta 

medición, representa una de las pruebas de 

supervisión más importantes que un viverista 

puede realizar, porque muchas especies de 

árboles, especialmente coníferas, son muy 

sensibles a la elevada salinidad y pueden dañarse 

rápidamente (fig. 4.1.29). Por ejemplo, Phillion y 

Bunting (1983), recomiendan un intervalo de CE de 

entre 1 200 y 2 500 μS/cm, para las plantas de 

Picea (spruce) cultivadas en un sustrato de turbavermiculita. Recuerde que la salinidad aumenta 

cuando se permite que la solución del medio baje 

del punto de saturación; entonces el riego deberá 

ser frecuente, particularmente durante la 

germinación de la semilla y la emergencia de la 

plántula. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

58

Figura 4.1.27 Los programas de inyección de fertilizante, pueden ser supervisados en cinco diferentes etapas durante la 

formulación de la fertilización y durante el proceso de aplicación. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

59

Una muestra de extracto de medio saturado, puede 

también ser analizada en sus nutrientes 

individuales. Este análisis nutricional, el cual debe 

ser realizado con estuches de análisis portátiles, o 

mediante el envío de la muestra a un laboratorio 

comercial, determina los niveles actuales de iones 

nutritivos en la solución del medio de crecimiento. 

Han sido publicadas muchas recomendaciones 

distintas, acerca de los niveles ideales de los 

nutrimentos minerales en los sustratos artificiales, 

con propósitos ornamentales, y las 

recomendaciones varían entre diversos 

laboratorios (cuadro 4.1.29). 

Figura 4.1.28 El paso más importante en el 

procedimiento de supervisión de la fertilización líquida, es 

verificar el pH, la conductividad eléctrica y nutrientes 

específicos de la "solución fertilizante aplicada". 

Cuadro 4.1.28 Niveles de salinidad y de nutrientes 

minerales para plantas de Picea mariana (black spruce) 

en un sustrato de turba-vermiculita, usando la técnica de 

extracto de medio saturado. 

Intervalo de CE (μS/cm) Salinidad 

0 - 1 200 Baja 

1 200 - 2 500 Normal 

2 500 - 3 000 Elevada 

3 000 - 4 000 Excesiva 

> a 4 000 Letal 

Nutriente mineral Intervalo óptimo (ppm) 

NH4-N 15 - 65 

P 35 - 95 

K 25 - 115 

Ca 30-60 

Mg 15-35 

Fuente: Timmer y Parton (1982). 

Cuadro 4.1.29 Guías desarrolladas por cuatro 

laboratorios hortícolas de prueba, para niveles óptimos 

de nutrientes minerales, en especies hortícolas, con 

sustratos artificiales, usando la técnica de extracto de 

medio saturado. 

Concentración del nutriente (ppm) 

Nutriente Estado 

de 

Michigan 

Estado 

de Ohio 

W.R. 

Grace 

Univ. GA

NO3-N 100-199 100-175 35-180 80-139 

P 6-10 8-14 5-50 3-13 

K 150-249 175-225 35-300 110-179 

Ca > 200 250-325 20-400 140-219 

Mg > 70 80-125 15-200 60-99 

Fuente: modificado de Kirven (1986). 

Figura 4.1.29 El crecimiento de las plantas de Pinus 

resinosa (red pine) aumenta con el incremento de los 

niveles de fertilizante, medido por conductividad eléctrica, 

hasta aproximadamente 1 800 μS/cm. Más allá de este 

nivel de salinidad, el crecimiento disminuye gradualmente 

hasta que la mortalidad ocurre (modificado de Timmer y 

Parton, 1982). 

Desafortunadamente, la investigación acerca de los 

mejores niveles nutricionales para las especies 

forestales es limitada, aunque Timmer y Parton 

proveen algunas guías tentativas para los 

nutrientes principales (cuadro 4.1.28). Hallett 

(1982), ha desarrollado niveles nutricionales 

recomendables para los macronutrientes, con base 

en los extractos del medio de crecimiento, y 

concluye que el análisis químico de la solución del 

medio de crecimiento, es una herramienta efectiva 

para los operarios de invernaderos. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

60

Lixiviado. La prueba final de fertilidad involucra la 

toma de las lecturas de CE y de pH de la solución 

"lixiviada", la cual drena del fondo de los 

contenedores (fig. 4.1.27). Este lixiviado puede ser 

obtenido mediante la colocación de un tubo de 

ensayo u otro contenedor en la perforación de 

drenaje del contenedor durante la fertilización 

líquida. Puede ser necesario colectar el lixiviado 

de varios contenedores, antes de que se cuente 

con suficiente solución para operar el medidor de 

CE. Un procedimiento para calcular el nivel de 

sales en la solución lixiviada, fue desarrollado por 

Tinus y McDonald (1979) (cuadro 4.1.30). La 

lectura de la CE de una solución fertilizante 

aplicada, es sustraída de la lectura de CE de la 

solución del lixiviado, y este valor (X) es calificado 

acorde con la escala del cuadro 4.1.30. Si la CE 

del lixiviado excede la CE de la solución fertilizante 

aplicada en 1 000 μS/cm, entonces un exceso de 

salinidad se está formando en el medio de 

crecimiento, y no está ocurriendo una apropiada 

lixiviación. En esta situación, los contenedores 

deberán ser regados inmediatamente con agua 

hasta que la lectura de CE regrese a la normalidad. 

Si la lectura de CE del lixiviado se mantiene 

consistentemente elevada, entonces la cantidad de 

solución aplicada durante el riego o la fertilización 

deberá ser aumentada para asegurar una 

adecuada lixiviación. 

Cuadro 4.1.30 Supervisando el lixiviado de plantas 

producidas en contenedor, usando la ecuación X = 

lixiviado - solución de fertilizante aplicado. 

Lectura de CE 

(μS/cm) 

Diagnóstico 

Si X = 100 a 200 Crecimiento normal de la 

planta 

Si X = 1 000 Probables problemas 

Si X = 3 000 Mortalidad probable 

Fuente: modificado de Tinus y McDonald (1979). 

4.1.9.3 Análisis nutricional de las plantas. 

Una de las mejores formas para supervisar el 

programa de fertilización en los viveros forestales 

que producen en contenedor, es el análisis químico 

del follaje de las plantas para determinar los niveles 

de los nutrientes. La concentración de nutrientes 

minerales en el follaje de las plantas es una medida 

verdadera de la efectividad del programa de 

fertilización, porque el análisis nutricional de la 

planta (ANP) refleja la absorción actual de 

nutrientes minerales, en comparación con las 

pruebas de la solución del medio de crecimiento, 

las cuales sólo miden los nutrientes "disponibles" 

en la zona radical. Los laboratorios analíticos son 

capaces de medir con precisión y exactitud los 

niveles de los 13 nutrientes minerales, a partir de 

una pequeña muestra de tejido vegetal. Estos 

laboratorios pueden ser gubernamentales, de 

universidades agrícolas o de centros de 

investigación, o pueden ser privados. Sin 

embargo, la mayoría de los laboratorios trabajan 

principalmente con cultivos agrícolas u hortícolas, 

de modo que es importante contactar uno que 

tenga experiencia con especies forestales. Estos 

laboratorios están familiarizados con los mejores 

procedimientos analíticos para especies de árboles 

y, pueden proporcionar útiles interpretaciones de 

los resultados del ANP. 

Recolección y manejo de la muestra. La 

precisión del ANP depende del cuidado con el cual 

las muestras sean colectadas y manejadas para su 

análisis. Para plantas de especies forestales, el 

mejor tejido para un ANP es toda la parte aérea de 

la planta joven, o solo el follaje, en el caso de 

árboles más grandes. La muestra deberá estar 

limpia y colectada aleatoriamente de la población 

de plantas de interés (un cajón de invernadero, o el 

material proveniente de un lote particular de 

semilla). Debido a que con frecuencia las plantas 

producidas en contenedores son pequeñas, las 

muestras de tejido para el análisis nutricional son 

usualmente remitidas como un compuesto de 

plantas individuales (Landis, 1985). 

Aproximadamente 60 g de tejido fresco, o 10 g de 

tejido anhidro, son requeridos usualmente para 

realizar la prueba, así que la muestra compuesta 

deberá consistir de un mínimo de 20 a 50 plantas 

(Aldhous, 1975; Solan, 1980). Los análisis 

nutricionales de plantas comúnmente cuestan de 

US$ 10 a US$ 50 por muestra, dependiendo de 

qué pruebas sean realizadas. La muestra 

usualmente es almacenada y embarcada en un 

refrigerador, aunque algunos laboratorios sugieren 

el secado de la misma. Es juicioso contactar al 

laboratorio de pruebas antes de obtener las 

muestras, de manera que puedan establecerse 

procedimientos adecuados para su obtención y 

manejo. 

Estándares e interpretación de los resultados 

del análisis nutricional de plantas. Es 

relativamente fácil y barato obtener los ANP, pero 

la interpretación de los resultados de esta prueba 

puede ser difícil. La interpretación consiste en la 

comparación de los resultados de la prueba con 

niveles nutricionales estándar, para determinar si 

tales niveles en la planta son los adecuados, 

excesivos o deficientes. Muchos estándares de 

nutrientes han sido publicados en la literatura, pero 

muchos corresponden a árboles maduros, o bien 

no fueron desarrollados bajo las condiciones de los 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

61

viveros que producen en contenedor. En el cuadro 

4.1.31, se proporcionan estándares de nutrientes 

minerales y proporciones, para plantas de 

coníferas, información que puede servir como guía 

general. Sin embargo, cada vivero deberá 

comenzar a desarrollar sus propios estándares de 

ANP a causa de la variación que existe entre 

especies, etapas de crecimiento de las plantas y 

prácticas culturales. Una opción es tener plantas 

de un cultivo ideal analizadas en varias etapas de 

desarrollo, y usar tales datos como referencia. 

Hallett (1982), ha desarrollado guías para los 

niveles de concentración de N en plantas de Picea 

glauca (white spruce) P. mariana (black spruce) y 

Pinus banksiana (jack pine) en varias etapas de 

desarrollo, y estos datos ilustran que las 

concentraciones de N normalmente se reducen 

durante la estación de crecimiento, debido al efecto 

de dilución. 

Los resultados del ANP pueden ser confusos o aún 

parecer contradictorios para el novato; los 

viveristas que están considerando por vez primera 

los ANP, deberán contactar un asesor en 

fertilización para recibir ayuda con la interpretación 

de resultados. La interpretación del ANP, es más 

un arte que una ciencia, a causa de las complejas 

interrelaciones entre los nutrientes minerales, y los 

cambios en las concentraciones relativas de los 

nutrientes, que acontecen durante la estación de 

crecimiento. Una discusión más completa acerca 

de los análisis nutricionales de plantas y de las 

relaciones entre los niveles nutricionales y la 

calidad de las plantas, es proporcionada por Landis 

(1985). 

Cuadro 4.1.31 Estándares de niveles nutricionales 

foliares, y proporciones nutricionales para especies 

forestales producidas en contenedor (peso anhidro)* 

intervalo adecuado +

(brotes tiernos) 

Proporción de 

nutrientes ++

Macronutrientes (%) 

N 1.40-2.20 1.00 

P 0.20-0.40 0.20 

K 0.40-1.50 0.55 

Ca 0.20-0.40 0.06 

Mg 0.10-0.30 0.05 

S 0.20-0.30 0.09 

Micronutrientes (ppm) 

Fe 60-200 0.007 

Mn 100-250 0.004 

Zn 30-150 0.0003 

Cu 4-20 0.0003 

Mo 0.25-5.0 0.00007 

B 20-100 0.002 

Cl -- 0.0003 

* Los valores variarán con diferentes especies. 

+ Datos modificados de W. R. Grace Co. y Swan (1971), 

y de Hallet (1985); los niveles de macronutrientes con 

frecuencia exceden estos intervalos, debido al consumo 

en exceso. 

++ Modificado de Ingestad (1979). Para calcular los 

niveles nutricionales individuales, multiplique el nivel de N 

por la fracción decimal (por ejemplo, para determinar el 

nivel de P cuando el nivel de N es 2.0%, multiplique 2.0% 

por 0.20, que da 0.40%). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

62

4.1.10 Efectos del Uso de Altas Concentraciones de Fertilizante. 

Los viveristas que producen en contenedor, 

rutinariamente promueven un rápido crecimiento en 

las plántulas, mediante elevadas tasas de 

fertilización, porque el espacio en el invernadero es 

caro y algunos viveristas buscan producir más de 

un cultivo por año. La parte aérea de la planta 

puede ser "forzada" con aplicaciones pesadas de 

fertilizante, especialmente con elevados niveles de 

N, pero deberán considerarse los efectos 

colaterales potenciales de la fertilización excesiva: 

consumo excesivo de nutrientes minerales por las 

plantas, y contaminación del agua de desecho. El 

primero de estos efectos, es discutido en las 

secciones siguientes, y la contaminación del agua 

de desecho se discute en la sección 4.2.8.2. 

4.1.10.1 Consumo excesivo de nitrógeno y 

calidad de la planta. 

Las elevadas tasas de fertilización con frecuencia 

acarrean un consumo excesivo de nutrientes 

minerales en el ambiente ideal de cultivo. La 

absorción de nutrientes por las plantas en 

contenedor es elevada, pues las condiciones en el 

medio de crecimiento, tales como temperatura, 

nivel de humedad y pH, propician una rápida 

absorción de iones (Ver la sección 4.1.2.1, y la 

figura 4.1.3 para una discusión relacionada con la 

absorción de nutrientes). 

El consumo excesivo de cualquiera de los 13 

elementos minerales escenciales, es posible, pero 

las plantas acumulan elevados niveles de ciertos 

nutrientes (N,K) en mayor medida que otros. 

Algunos especialistas de viveros, no consideran al 

consumo excesivo como un problema, sino como 

un mero desperdicio de fertilizante. No obstante, 

se está encontrando evidencia de que los niveles 

nutricionales elevados en el follaje, especialmente 

de N, pueden resultar dañinos. Timmer y 

Armstrong (1987a), se refieren a los efectos 

negativos derivados de fertilización con mucho N, 

como "toxicidad por nitrógeno". 

La absorción de N es la más susceptible de 

alcanzar niveles de consumo excesivos durante la 

fase de crecimiento rápido, cuando son empleados 

elevados niveles de N. Las plantas toman el N 

rápidamente y parecen almacenarlo en el follaje, 

porque las concentraciones de N foliar continúan 

aumentando, sin que se presente un crecimiento 

adicional (Gilliam et al., 1980). Ingestad (1979), 

cultivó plantas de dos especies de coníferas, con 

niveles de N de 20 a 1 200 ppm, y encontró que las 

dos especies podían acumular elevadas 

concentraciones de N (2.7 a 3.4%) antes de que 

declinara el crecimiento de las plantas, y de que 

ocurriera mortalidad (fig. 4.1.30). El análisis 

nutricional de las plantas, al término de una prueba 

de fertilización a gran escala, usando como 

tratamientos una variedad de fertilizantes líquidos y 

fertilización de liberación lenta, reveló que los 

niveles de N variaron de 1.9 a 5.5%, con un 

promedio de 3.6% (Matthews, 1986). Como Swan 

(1971) considera que los niveles foliares superiores 

de 2.5 a 2.8% de N, representan consumo 

excesivo, estos datos indican que muchos de los 

viveros operativos están aplicando demasiado N en 

sus programas de fertilización. 

Figura 4.1.30 Dos especies diferentes de coníferas 

presentan diferentes modelos de absorción de nitrógeno 

(N). Observe que los niveles de N foliar incrementan 

hasta un punto, después del cual eventualmente ocurre 

mortalidad (modificado de Ingestad, 1979). 

Ciertos riesgos han sido asociados con el consumo 

excesivo de N, tanto en los viveros forestales que 

producen en contenedor, como en aquellos que 

producen plantas a raíz desnuda: 

1 Las elevadas tasas de fertilización con N 

pueden afectar adversamente la morfología de 

las plantas, porque el N produce exceso de 

crecimiento de la parte aérea, a expensas del 

crecimiento de la raíz. Cornett (1982), estudió 

los efectos de la concentración de N en el 

crecimiento de plantas de Pinus ponderosa

(ponderosa pine) producidas en contenedor, y 

encontró que la proporción entre raíz y parte 

aérea disminuyó al aumentar los niveles de 

fertilizante con N. Timmer y Armstrong (1987b), 

encontraron que las elevadas tasas de 

fertilización con N, pueden reducir el peso y 

fibrosidad del sistema radical. Torbert et al. 

(1986), encontró que las plantas de Pinus 

taeda (loblolly pine) cultivadas a bajas tasas de 

fertilización, tuvieron sistemas radicales que 

fueron más largos, fibrosos, y que tuvieron un 

mayor grado de ramificación. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

63

2. La prolongada suculencia de los tejidos, y la 

producción de crecimiento de la parte aérea ya 

avanzada la estación de crecimiento, puede 

aumentar la posibilidad de daños por frío. 

Gilliam et al. (1980), encontró que los niveles 

elevados de N (150 a 300 ppm), originaron 

flujos secundarios de crecimiento, y que 

retrasaron la defoliación en plantas de Acer 

rubrum (red maple) por 3 semanas, en 

comparación con niveles de N menores (50 

ppm). Aronsson (1980), estudió la resistencia 

ante heladas en Pinus sylvestris (Scotch pine), 

encontrando una clara correlación entre la 

concentración de N foliar y el daño por frío: las 

plantas con un nivel de N foliar de 1.3 a 1.8% 

sufrieron menos daño por heladas que aquellas 

con niveles de N mayores de 2.0%. Larsen 

(1978; citado por Aronsson, 1980), halló que 

Pseudotsuga menziesii (Douglas fir) presentó 

una mayor resistencia al frío, con 

concentraciones de N foliar de 1.3 a 1.4% 

(cuadro 4.1.32). Hallett (1985), reporta que las 

plantas de Abies balsamea (balsam fir) con 

una concentración de N foliar superior a 2.2%, 

fueron más susceptibles a daño por heladas. 

3 Los elevados niveles de sales fertilizantes en el 

medio de crecimiento, han mostrando que 

afectan la formación de algunas micorrizas en 

las plantas producidas en contenedor. Torbert 

et al. (1986), encontró que, aunque las elevadas 

proporciones de fertilizante produjeron plantas 

de Pinus taeda (loblolly pine) más altas, la 

colonización de micorrizas fue tres veces 

superior con menores tasas de fertilización. 

Cornett (1982), encontró que el nivel de N en la 

fertilización y la inoculación micorrízica está 

correlacionada inversamente en plantas de 

Pinus ponderosa (ponderosa pine) producidas 

en contenedores: la inoculación micorrízica 

disminuyó linealmente con el aumento en la 

concentración de N. Crowley et al. (1986), 

analizó el efecto de fertilizantes de liberación 

lenta en la formación de micorrizas en plántulas 

de Pinus echinata (short leaf pine), y encontró 

que la tasa de aplicación de fertilizante, la tasa 

de liberación del fertilizante, y la relación N-P-K, 

tuvieron todos un efecto. Varios hongos 

micorrízicos respondieron diferencialmente a la 

fertilidad, y algunos hongos como Telephora

spp., parecen prosperar en los ambientes de 

gran fertilidad. Los efectos de la fertilización y 

de otras prácticas de cultivo sobre las 

micorrizas, son detalladas en el volumen cinco 

de este manual. 

4 La fertilización con elevados niveles de N ha 

demostrado afectar adversamente la 

supervivencia de las plantas y su crecimiento 

luego de ser plantadas. Etter (1969), estudió 

los efectos de tres niveles de N en la 

supervivencia a la sequía en plantas de Pinus 

contorta (Lodgepole pine), y encontró que las 

plantas cultivadas con elevados niveles de N 

(500 ppm), tuvieron menores supervivencias al 

ser plantadas que aquellas cultivadas bajo 

fertilización estándar con N. La supervivencia 

de las plántulas de Pseudotsuga menziesii

(Douglas fir) y de Picea glauca (White spruce) 

luego de ser plantadas, se encontró que 

mostraron una relación curvilínea con la 

concentración de N foliar, con la mayor 

supervivencia alrededor del nivel de 

concentración de N igual a 2.1% (fig. 4.1.31). 

Cornett (1982), concluyó que la pobre 

proporción entre raíz y parte aérea causada por 

la elevada fertilización con N, será una 

desventaja para las plantas de Pinus 

ponderosa (Ponderosa pine) que sean 

plantadas en sitios secos. 

Cuadro 4.1.32 Relaciones entre los niveles de nitrógeno (N) foliar y la calidad de las plantas. 

Atributo de calidad Fuente Especies 

Concentración de N foliar 

recomendada (%) 

Resistencia al frío Larsen (1978) Pseudotsuga menziesii 

(Douglas fir) 

1.3-1.4 

Resistencia al frío Aronsson (1980) Pinus sylvestris

(Scotch pine) 

1.3-1.8 

Resistencia al frío Hallett (1985) Abies balsamea 

(Balsam fir) 

< 2.2 

Sobrevivencia al ser plantada van den Driessche (1988) Pseudotsuga menziesii 

(Douglas fir) 

Picea glauca 

(White spruce) 

1.6-2.4 

Sobrevivencia y crecimiento Duryea y McClain (1984) Coníferas 1.7-2.3 

General Youngberg (1984) Coníferas < 2.0 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

64

Figura 4.1.31 La concentración de nitrógeno (N) foliar de 

plantas de Pseudotsuga menziesii (Douglas fir) y de 

Picea glauca (white spruce), está relacionada con la 

supervivencia después de 3 años de ser plantadas en el 

campo (tomada de van den Driessche, 1988). 

5 Los elevados niveles de nutrientes en el follaje, 

pueden resultar en un incremento del daño por 

ramoneo de animales después de que las 

plantas sean establecidas en el campo. 

Muchos especialistas en reforestación han 

recibido noticias de que las plantas producidas 

en contenedores son preferidas por el venado y 

por el ante, en comparación con las plantas 

producidas a raíz desnuda. 

Para obtener más información acerca de los 

factores que afectan la calidad de las plantas, ver 

el capítulo correspondiente a dormición y 

resistencia, en el volumen seis de la presente serie. 

4.1.10.2 El nivel ideal de nitrógeno en la 

fertilización. 

El nivel ideal de N para la producción de plantas de 

alta calidad en contenedores, ha sido tema de 

mucha discusión entre viveristas. El mejor nivel de 

N en la fertilización, variará con diversos factores, 

pero la experiencia de producción en viveros, con 

varias especies de coníferas del oeste de los EUA, 

se inclina por un nivel de N moderado, o alrededor 

de 100 a 150 ppm durante la fase de crecimiento 

rápido, para promover el desarrollo de tejidos 

robustos y lignificados. Los niveles 

extremadamente altos de N (> 250 ppm), 

generalmente promueven un crecimiento suculento 

de la parte aérea, y un desbalance en la relación 

parte aérea entre raíz (T/R), y por tanto, deberán 

ser evitados. Scarratt (1986), encontró que los 

niveles de N superiores a 100 ppm, comúnmente 

acarrean una elongación excesiva de la parte 

aérea, y una pobre relación T/R, en Pinus 

banksiana (jack pine) producidos en contenedor. 

Phillion y Libby (1984), estudiaron el efecto de 

fertilización con N en el crecimiento de Picea 

mariana (black spruce), empleando fertilizantes 

líquidos; ellos cultivaron plantas con niveles de N 

de 0 a 500 ppm, y registraron la altura de las 

plántulas, su diámetro y su peso anhidro (cuadro 

4.1.33). Con base en estas tendencias de 

crecimiento, y en el color del follaje, concluyeron 

que la concentración de 100 ppm produjo las 

mejores plantas. Scarratt (1986), encontró que, 

bajo fertilización constante, las 100 ppm de N 

fueron adecuadas para las plantas de Pinus 

banksiana (jack pine) en un ciclo productivo de 10 

a 12 semanas. Para el caso de fertilizantes de 

liberación lenta, Crowley et al. (1986), recomienda 

que los fertilizantes con tasas de liberación amplia 

(8 a 9 meses), deberán ser utilizados a razón de 

4.5 kg/m3

 (7.5 libras por yarda cúbica), para 

producir la combinación ideal de crecimiento de la 

planta y el desarrollo de micorrizas. 

El mejor nivel de N en la fertilización, variará con 

muchos factores de cultivo, y entre las especies, 

pero manteniendo un nivel moderado de N, de 

alrededor de 100 o 150 ppm durante la fase de 

crecimiento rápido, se promueve la robusticidad y 

la lignificación en el desarrollo del tejido. La mejor 

forma de supervisar la fertilidad de N, es a través 

de ANP regulares a lo largo del cultivo, 

conjuntamente con el seguimiento del crecimiento 

de las plantas, tanto en el vivero como en el sitio de 

plantación. Los niveles óptimos de N, deberán 

mantenerse alrededor del 2% para lograr la mejor 

supervivencia, y el mejor crecimiento después de la 

plantación (fig. 4.1.31). 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

65

Cuadro 4.1.33 Crecimiento de plántulas de Picea mariana (black spruce) producidas en contenedor, con diferentes niveles 

de fertilización con N. 

Nivel de N 

(ppm)

Altura 

(cm)

Diámetro 

basal 

(mm)

Peso 

anhidro 

(g)

Color del follaje

12 46.0 5.4 9.13 Verde pálido, puntas amarillas 

25 46.5 5.3 8.81 Verde pálido, puntas amarillas 

50 47.5 5.6 10.67 Verde saludable 

75 48.7 5.6 11.05 Verde saludable 

100* 49.6 5.7 11.57 Verde saludable

125 48.3 5.5 11.11 Verde saludable, algunas acículas cortas 

150 47.4 5.5 11.50 Verde saludable, algunas acículas cortas y puntas cafés 

175 46.5 5.3 10.10 Verde saludable, algunas acículas cortas y puntas cafés 

200 47.6 5.4 11.43 Verde saludable, algunas acículas cortas y puntas cafés 

300 42.3 5.3 9.32 Acículas amarillas y cafés 

400 40.7 4.8 8.35 Acículas amarillas y cafés 

500 35.1 4.2 5.64 Acículas amarillas y cafés, alguna mortalidad de plantas 

* Nivel de fertilización considerado como óptimo. 

Fuente: Phillion y Libby (1984). 
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Volumen 4: Fertilización y Riego

66

4.1.11 Conclusiones y Recomendaciones

La fertilización es una de las prácticas de cultivo 

más importantes en un vivero forestal que produce 

en contenedor, y los viveristas deberán planear 

cuidadosamente y evaluar regularmente sus 

programas de fertilización, para asegurar que están 

produciendo plantas de la más alta calidad. El 

programa de fertilización para un vivero forestal 

que produce en contenedor, deberá diseñarse para 

mantener concentraciones específicas de los 13 

elementos nutrientes esenciales en el medio de 

crecimiento y mantenerlos en balance, pero deberá 

también diseñarse para permitir los cambios 

nutricionales necesarios durante el ciclo de cultivo. 

La elección de un fertilizante depende de una 

multitud de factores: forma de fertilización, grado, 

fuente de nitrógeno, tasa de liberación de 

nutrientes, interacción con el medio de crecimiento, 

eficiencia de uso por la planta y costo. De ser 

posible, los viveristas deberán realizar sus propias 

pruebas de fertilización, porque las tasas de 

fertilización, así como todas las prácticas de cultivo, 

están relacionadas con muchos factores 

específicos del vivero. El tipo de riego y la 

frecuencia, así como las características del 

sustrato, afectan la absorción de nutrientes 

minerales. A causa de estas complejas relaciones, 

las prácticas de fertilización pueden tener que ser 

ajustadas periódicamente, en respuesta al 

crecimiento de las plantas, y a su aptitud para ser 

plantadas en campo. 

Aunque la incorporación de fertilizantes sólidos 

dentro del sustrato puede ser justificable en 

algunos casos, la inyección directa de fertilizantes 

líquidos en el sistema de riego es recomendada 

siempre que sea posible. Los beneficios de esta 

técnica incluyen un control preciso de la 

concentración y el balance de los 13 nutrientes 

minerales, la habilidad para cambiar por completo 

la solución nutritiva en cualquier momento, y una 

muy baja posibilidad de fertilizar excesivamente y 

prevenir así el resultante daño por sales. 

La técnica de fertilización constante 

(reemplazamiento), es recomendada porque 

minimiza las posibilidades de fertilizar en exceso, 

promueve un flujo regular en el medio de 

crecimiento y así previene la formación de sales, 

nivela el contenido nutricional del sustrato a 

especificaciones objetivo, y permite que los niveles 

de nutrientes en la solución del medio de 

crecimiento sean ajustados con rapidez. 

Los niveles nutricionales pueden ser supervisados 

en diferentes etapas del proceso de fertilización, 

comenzando con las sales nutritivas propias del 

agua riego, y finalizando con la solución lixiviada 

que drena del fondo del contenedor. Los viveristas 

deberán obtener sus propios medidores de pH y de 

conductividad eléctrica, para supervisar el proceso 

de fertilización. Los análisis de nutrientes en 

plantas deberán ser practicados regularmente en 

laboratorios analíticos, para estimar la utilización de 

nutrientes minerales. Cada vivero deberá 

comenzar a desarrollar sus propios estándares de 

análisis de nutrientes, a causa de la variación que 

existe entre especies, etapas de crecimiento de las 

plantas y prácticas de cultivo. 

Las elevadas tasas de fertilización empleadas en 

algunos viveros forestales que producen en 

contenedor, para promover un rápido crecimiento 

de la parte aérea, pueden resultar detrimentales. 

Los efectos colaterales potenciales de la 

fertilización excesiva, incluyen consumo de más de 

alguno de los nutrientes minerales (especialmente 

N), inhibición del desarrollo micorrízico y 

contaminación por las aguas de desecho. Los 

peligros asociados con un consumo excesivo de N, 

incluyen un excesivo crecimiento de la parte aérea, 

a expensas del crecimiento de la raíz, una 

prolongada suculencia del tejido y una producción 

de crecimiento de flujo secundario tardío, en la 

estación de crecimiento, así como una baja 

supervivencia y crecimiento de las plantas, una vez 

que son establecidas en campo. La mejor manera 

de supervisar la fertilidad con N, es a través de 

análisis químicos regulares del tejido de las plantas 

durante la etapa de crecimiento, y después de 

haber sido plantadas. Los niveles foliares objetivo 

deberán mantenerse en un 2%, o poco menos, 

para conseguir las mejores supervivencias y 

crecimiento después que las plantas son 

establecidas en el campo. 
Manual de Viveros para la Producción de Especies Forestales en Contenedor 

Volumen 4: Fertilización y Riego

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