标题：黄瓜绿斑驳花叶病毒
简介
学名 Cucumber green mottle mosaic virus
黄瓜绿斑驳花叶病毒
异名 Cucunber virus 3, Cucumis virus 2 
英文名 Cucumber green mottle mosaic virus
分类地位 由Ainsworth (1935)首次记述. 在欧洲, 印度, 和日本葫芦科植物上发现的一种RNA病毒，病毒粒子细管状长度约300×18 nm. 病毒易通过汁液传播，但病毒的寄主范围较窄，可通过树叶的接触，植物栽培中的操作，土壤及黄瓜种子传毒。
发生及分布
黄瓜绿斑驳花叶病毒病20世纪30年代在欧洲国家发生，60年代因黄、西瓜和瓠瓜而传入印度和日本，80年代传入台湾。2002年中国从日本引进种苗中截获，2004年厦门从日本进口的南瓜种子上检测到CGMMV，2005年中国辽宁省盖州市感染CGMMV 在我国辽宁盖州地区造成西瓜大面积毁灭,受害面积达333 hm，约13hm绝收，CGMMV 现在中国部分地区已造成西瓜毁灭性的损失。农业部发布的第788 号公告，郑重宣布将CGMMV 确定为全国农业植物检疫性有害生物，属国家三类检疫性病害。
目前，CGMMV 在全球主要分布在希腊( 克里特岛)、罗马尼亚、中国台湾、巴西( Sao Francisco 地区)、
前苏联、日本、伊朗、丹麦、印度( Delhi)、芬兰、德国、英国、沙特阿拉伯、韩国、以色列、波兰；在中国主要分布于辽宁、河北、湖北、广东和山东，发生率达80%，河南、四川、江西、上海、新疆、陕西及宁夏等省份还未发现。[1]
寄主植物
自然界寄主：
黄瓜，西瓜和甜瓜(Cucumis melo)作物，不能侵染西葫芦(Cucurbita pepo)，在葫芦(Lagenaria siceraria)上也有发现。
大多数英国株系只侵染葫芦科植物(Cucurbitaceae)；日本和印度的有些株系和英国分离的一个株系能在苋色藜(Chenopodium amaranticolor)和/或曼陀罗（Datura stramonium）上产生局部枯斑(Komuro et al., 1971; Tochihara & Komuro, 1974)。东欧的桃叶珊瑚分离物能够在三生烟，珊西烟(Brcák et al., 1962)上产生局部褪绿斑，在昆藜上产生系统斑纹。
鉴别寄主：
没有特别的鉴别寄主，对于某些株系鉴定来说，血清学测试和电镜观察是必需的。 
黄瓜（Cucumis sativus）－抗病。无局部症状；接种2星期后产生轻微的明脉，继而出现明亮绿黑色斑纹，水泡，叶片畸形（特别是在冬天），植株矮化。
苋色藜（Chenopodium amaranticolor）－经西瓜株系、Yodo株系和印度C株系(Tochihara & Komuro, 1974)侵染后出现细小局部坏死斑，而欧洲黄瓜株系不出现这种症状；无系统侵染。
曼陀罗（Datura stramonium）－Yodo株系和日本的黄瓜株系在接种后1星期产生能扩散的局部褪绿斑；无系统侵染。
毒源繁殖保存寄主：
黄瓜是病毒繁殖与保存的优良寄主，但毒源最好是-20℃叶片冻存或汁液冻存。
测定寄主：
对大多数株系来说没有非常满意的测定寄主，但对于日本黄瓜株系来说，曼陀罗（Datura stramonium）是最好的鉴别寄主；苋色藜可以作为日本Yodo株系与西瓜株系及印度C株系的测定寄主(Tochihara & Komuro, 1974)。
株系：
有些株系可以用血清学方法或在苋色藜（C. amaranticolor）和曼陀罗（D. stramonium）上的症状反应来区分(Tochihara & Komuro, 1974)。
主要株系：
典型株系(Ainsworth, 1935)－黄瓜绿色斑驳花叶病毒（Cucumber green mottle mosaic virus），在欧洲和英国报道，在果实上不出现症状，某些条件下在苋色藜上出现一些枯斑；不侵染曼陀罗（Datura stramonium）和矮牵牛（Petunia hybrida）。
黄瓜桃叶珊瑚花叶病毒（Cucunber aucuba mosaic virus）(Bewley, 1923)－=Cucumber virus 4(Ainsworth, 1935) = Cucumis virus 2A (Smith, 1957).在英国和欧洲报道，印度也有类似报道(Vasudeva et al., 1949)。在果实上诱发显症，苋色藜上出现局部枯斑，但不在曼陀罗（Datura stramonium）上引发枯斑。 
西瓜株系（Watermelon strain）－在日本报道(Komuro et al., 1971)。苋色藜上出现局部枯斑，但不在曼陀罗（Datura stramonium）上引发枯斑。 
日本黄瓜株系（Japanese cucumber strain）－在日本报道(Komuro et al., 1971)。在黄瓜上导致严重的果实变形，在曼陀罗（Datura stramonium）引发局部枯斑，但在苋色藜（C. amaranticolor）不引发局部枯斑。
Yodo株系（Yodo strain）－在日本Yodo报道(Kitani et al., 1970; Tochihara & Komuro, 1974).，在黄瓜上导致果实扭曲，在苋色藜，曼陀罗和矮牵牛（Petunia hybrida）上产生局部枯斑。
印度C株系（Indian strain C）－在印度bottlegourd中分离(Vasudeva et al., 1949)，产生水泡状色斑，矮缩及减产；在苋色藜C. amaranticolor上引发局部枯斑，曼陀罗D. stramonium上为隐症，不侵染烟草和矮牵牛（Petunia hybrida）。
危害情况
在黄瓜(Cucumis sativus)上产生的典型症状为叶片上出现色斑，水泡及变形，植株矮化，产量损失达15%(Fletcher et al., 1969)；受感染的果实通常没有症状，但有些株系能够使果实导致严重的色斑和变形 (Inouye et al., 1967a)，有些亚洲株系在叶片上并不出现症状但是却能造成产量下降(Smith, 1957).。
桃叶珊瑚花叶病毒侵染黄瓜产生叶片亮黄斑驳，新叶微有变形和矮化；果实出现黄化或出现银白色的条纹斑，特别是在高温下容易出现这种症状(Komuro et al., 1971)。
在西瓜上(Citrullus vulgaris)叶片只产生轻微的斑纹和矮化，但在果实中却造成严重的变色或使果实内部造成腐烂。
形态特征
病毒粒子特性：
沉淀系数(s°20,w)：185 S，195 S (Brcák et al., 1962) ；
等电点：pH：4.98(Oster, 1951; Brcák et al., 1962)；
A260/A280: 1.38. Amax(260)/Amin(249): 1.05. (Values corrected for light-scattering; M. Hollings, unpublished data).
病毒粒子结构：
直形棒状，300×18nm，一个螺旋23?，半径20 ?，RNA位于距中心40 ?处，一个螺旋由49个亚单位或3个转角组成(Holmes & Franklin, 1958)。
病毒粒子组成：
核酸：
单链线性RNA，基因组长度6.5kb，基因组为单一组分，碱基比：G：A：C：U=25:26:19:30(Linnasalmi & Toiviainen, 1974), 占粒子重的6%(Knight, 1954)。基因组不带Poly（A）尾巴，而具有tRNA-like结构。
GenBank登录号：
D12505 Em(40)_vi:MCGSHCG Gb(84)_vi:MCGSHCG 黄瓜绿斑驳花叶病毒(CGMMV) 全长基因组. 10/92 6,421bp. 
J02054 Gb(84)_vi:MCGCPW 黄瓜绿斑驳花叶病毒外壳蛋白基因. 9/83 1,071bp. 
J04322 Em(40)_vi:TOBMCG30 Gb(84)_vi:MCG30KP 黄瓜绿斑驳花叶病毒30K蛋白全长基因,180K 蛋白和外壳蛋白基因3个序列.
蛋白：
占粒子重的94%，三个黄瓜分离物，每个都含有15个氨基酸，平均160个残基/亚单位，分子量17.2kDa(Linnasalmi & Toiviainen, 1974)，三个欧洲的黄瓜分离物的氨基酸组成与西瓜分离物(Nozu et al., 1971)及CV-4分离物（桃叶珊瑚花叶病毒）(van Regenmortel, 1967)很相似，而黄瓜桃叶珊瑚花叶分离物与以上分离物的氨基酸组成有些差异（Tung & Knight ,1972； Linnasalmi & Toiviainen , 1974).
生物学
血清学及亲缘关系：
病毒具有很强的抗原性。与其他烟草花叶病毒属（tobamovirus）出现的症状形态学上类似，血清学上也相关。西瓜株系与英国的两个株系及印度的C株系有较近的亲缘关系，但与日本的黄瓜株系、Yodo株系及烟草花叶病毒却有较远的亲缘关系，而与番茄花叶病毒及烟草花叶病毒属的其他成员的亲缘关系更远(Nozu et al., 1971; Tochihara & Komuro, 1974; van Regenmortel, 1975; M. Hollings, unpublished data).。日本黄瓜株系与Yodo株系的亲缘关系很近。
汁液稳定性：
所有株系都是极端稳定的。典型株系90℃处理10min失去侵染能力 (Smith, 1957)，黄瓜株系与yodo株系的致死温度为90-100℃(Kitani et al., 1970; Nagai et al., 1974),印度C株系为86-88℃(Vasudeva et al., 1949)。病毒汁液稀释限点为10-6-10-7(Nagai et al., 1974).,常温下病毒侵染力可保持数月，在0℃可保持数年。
传播途径
介体传播：
桃蚜（Myzus persicae）和棉蚜（Aphis gossypi）i(Inouye et al., 1967a), 或黄瓜叶片甲虫不传毒(Nagai et al., 1974)，带病残留物可经土壤传播至根部(Inouye et al., 1967b; Nagai et al., 1974)，但可以通过溴化甲烷对土壤进行熏蒸而防止病毒的侵染(Inouye et al., 1967c)；植物之间的接触能进行传毒。
种传：
在黄瓜上，种子丰收后一个月种子传毒效率为8%，保存5个月则下降至1%seed (van Koot & van Dorst, 1959)。种传也出现在bottlegourd中，在西瓜中高达5%，虽然病毒在种子中不能检测到(Komuro et al., 1971; Nagai et al., 1974)。种子污染大多是外部因素引起的，并可以通过干热处理（70℃处理3天）减轻种子传毒而不影响种子的发芽率(Fletcher et al., 1969; Nagai et al., 1974)。
菟丝子传：
黄瓜绿色斑驳花叶病毒可以经Cuscuta subinclusa, 啤酒花菟丝子（C. lupuliformis）和C. campestris传毒(Schmelzer, 1956),，黄瓜桃叶珊瑚花叶病毒可经C. campestris传毒(Johnson, 1941).[2]
检疫与防治
对CGMMV 的防治同其他病害一样, 最根本的要使用无侵染的种苗; 在农事操作中尽量避免病毒经器械等传播, 加强栽培管理, 及时拔除初侵染病株, 销毁病株残体。
1.检疫处置：拔除病株并集中销毁、土壤消毒和轮作等, 采取这些措施后一般可认为已完成了疫情的处置。其中国内研究表明经焚烧深埋10 个月后的土壤或病残体样本仍可能被检测到CGMMV 核酸的存在, 但已无侵染活性。
2.种子处理：根据国内对带毒砧木进行药剂消毒、干热处理、干热处理结合药剂消毒、温汤浸种、温汤浸种结合药剂消毒等五种种子处理方法的研究：其中干热处理结合药剂消毒的防效最好, 为100%, 发芽率85.2% , 明显优于其他处理及对照; 其次是干热处理（40C、24h后72C、72h）,防效为93. 46%，发芽率85.6%；温汤浸种结合药剂消毒，防效为80. 47%，发芽率87.8%；药剂消毒（10%磷酸三钠溶液浸泡20~ 30min），防效为73. 93%，发芽率90.3%；温汤浸种（55C，1min），防效为58. 20%，发芽率93.7%。
3.抗病育种：选育抗病品种是行之有效的途径， Visser 等通过Cucumis angur ia L. 和C. z eyheri Sond 种间杂交选育抗病品种；Daryono 等采用RAPD 技术对melon 栽培品种的抗CGMMV 基因进行标记， 进行抗病育种；More 等已育成甜瓜抗病品种VRM5 -10， VRM29- 1， VRM31- 1， VRM31- 2， VRM42- 4 and VRM43- 6。 4.生物防治：许多生物防治研究已开展， Motoyoshi 等采用弱毒株系( SH33b) 对甜瓜进行交互保护试验； 黄细心Boer havia dif f usa 根部提取物或分离的糖蛋白可防治CGMM- V 在甜瓜上的侵染 ；Pseuderanthemum bicolor 叶片水提取物可防治CGMMV 在Cucumis melo var . momordica 上的侵染；叶子花叶片水提取物也可防治CGMMV 在西红柿、甜瓜和菽麻等一些重要经济植物上的侵染；商陆丙酮提取物、KR- 070( 一种菌类多聚糖) 、麦仙翁提取物对防治CGMMV 都有效果；将13 种厥类植物的提取液在Cucur bita p epo cv . Caserta 上进行体外抑制CGMMV活性试验，最高抑制率可达90%。[3]