## Anatomy and Histochemistry of Alliaceae and Iridaceae Species: Quality Control of Traditional Medicine Raw Materials
Anatomi dan Histokimia spesies Alliaceae dan Iridaceae: Kontrol Kualitas Bahan Baku Obat Tradisional
Reny Syahruni 1 , Abdul Halim Umar 1 *, Nur Afiah Ramadhani Halim 1
1 Department of Pharmaceutical Biology, Faculty of Health Sciences, University of Almarisah Madani, Perintis Kemerdekaan Street Km. 13.7, Paccerakkang, Biringkanaya, Makassar 90242, South Sulawesi, Indonesia
*Corresponding author: ahuhalim76@yahoo.com; (+62)85242868483
Received September 8, 2023; Accepted February 15, 2024; Available online February 28, 2024

## ABSTRACT
Alliaceae (Allium cepa and Allium ascalonicum) and Iridaceae (Eleutherine bulbosa) are widely used as spices, condiments, and traditional medicine. These three species are vulnerable to adulteration because they are morphologically similar in shape and colour. This study aims to identify and authenticate the three samples through anatomical and histochemical approaches. Anatomical  and  histochemical  analyses  were  performed  on  fresh  sections  of  the  bulbs  samples  according  to  standard anatomical  procedures  with  a  razor  blade  and  identification  of  the  main  compound  groups  using  specific  reagents. Anatomically, the three samples had similar patterns and cell organelles (cell nucleus, cytoplasm, and cell wall). Histochemical techniques identified the presence of alkaloids, phenolics, lipophilics, and terpenoids groups. Histochemical techniques can be applied in identifying the compound groups of the three samples and can be used as an alternative in testing the quality control of traditional medicine raw materials.
Keywords : Allium cepa , Allium ascalonicum , Eleutherine bulbosa , traditional medicine, standardisation

## ABSTRAK
Alliaceae ( Allium cepa dan Allium ascalonicum ) dan Iridaceae ( Eleutherine bulbosa ) banyak digunakan sebagai rempah, bumbu, serta obat tradisional. Ketiga spesies ini, rentan terhadap pemalsuan karena secara morfologi memiliki bentuk dan warna yang mirip. Penelitian ini bertujuan untuk identifikasi dan autentikasi ketiga sampel tersebut melalui pendekatan anatomi dan histokimia. Analisis anatomi dan histokimia dilakukan pada sayatan segar bulbus sesuai prosedur standar anatomis dengan silet dan identifikasi golongan senyawa utama menggunakan pereaksi spesifik. Secara anatomi, ketiga sampel memiliki pola dan  organel  sel  (inti  sel,  sitoplasma,  dan  dinding  sel)  yang  sama.  Teknik  histokimia  mengidentifikasi  adanya  golongan alkaloid, fenolik, lipofilik, dan terpenoid. Teknik histokimia dapat diaplikasikan dalam mengidentifikasi golongan senyawa ketiga sampel dan dapat dijadikan alternatif dalam pengujian kontrol kualitas bahan baku obat tradisional.
Kata Kunci : Allium cepa , Allium ascalonicum , Eleutherine bulbosa , obat tradisional, standardisasi

## PENDAHULUAN
Bawang merah atau Allium cepa var. Aggregatum (Alliaceae) secara lokal dimanfaatkan sebagai bumbu dan  obat  tradisional,  seperti  antimikroba, antiplatelet,
antikanker,
antidiabetik,
antihiperkolesterolemia,
dan
antioksidan (Chakraborty  et  al.,  2022;  M.  Kumar  et  al.,  2022). Bawang  bombay  merah atau Allium  ascalonicum (Alliaceae),  memiliki  aktivitas  antioksidan, antimikroba,  antifungi,  diabetes  mellitus,  dan  anti kanker (Raeisi et al., 2016; Moldovan et al., 2022).
Senyawa dengan kandungan sulfur (alil trisulfida, alil sistein,  dan  dialil  sulfida)  dan  flavonoids  paling banyak  dilaporkan  untuk  kedua  spesies Allium tersebut (Raeisi et al., 2016; Chakraborty et al., 2022; Moldovan  et  al.,  2022).  Selain  bawang  merah  dan bombay  merah,  secara  morfologi  terdapat  spesies yang sangat mirip dengan kedua tanaman tersebut, namun  berbeda  family  yaitu  bawang  dayak  atau Eleutherine bulbosa (Iridaceae). Tanaman  ini, secara tradisional  digunakan  untuk  mengobati  diabetes, kanker  payudara,  hipertensi,  dan  stroke  dengan senyawa  utama,  antara  lain:  naftalen,  antakuinon, naftakuinon,  dan  senyawa  volatil  organosulfur (Destanoglu, 2022; Kamarudin et al., 2022).
Pemalsuan adalah resiko untuk produk berharga dari  ketiga  sampel  tersebut.  Bubuk  bawang  merah berpotensi dipalsukan dengan jenis spesies yang lain, seperti bawang bombay merah dan  bawang dayak, kemungkinan  ini  sangat  besar  karena  secara morfologi  sangat  mirip  dengan  kedua  spesies tersebut. Kerentanan seperti penurunan hasil panen dan  fluktuasi  harga  dapat  menjadi  insentif  bagi oknum  yang  tidak  bertanggungjawab  untuk memalsukan produk-produk tersebut. Pencampuran untuk  mengurangi  kadar  dari  salah  satu  bahan tersebut  telah  dilaporkan,  yaitu  campuran  cabe merah,  bawang  merah,  dan  bawang  putih  (Kim  & Baik, 2016), dan campuran beberapa jenis bawang (Lee  et  al.,  2017).  Pemalsuan  bawang  paling mungkin  terjadi  dengan  spesies  lain  dalam  bentuk bubuk/serbuk  (Kadam  et  al.,  2013;  Saviano  et  al., 2019).  Proses  penyimpanan  yang  berbeda  dari berbagai  varietas  bawang  merah  juga  dapat mempengaruhi  kandungan  metabolit  sekundernya (Saviano et al., 2019).
Standardisasi  dan  kontrol  kualitas  produk tersebut  merupakan  tantangan  utama  dalam meningkatkan kualitas dan keamanannya, sehingga diperlukan  teknik  analisis  yang  dapat  diterima, efisien,  dan  murah  untuk  memvalidasinya. Penerapan  berbagai  teknik  karakterisasi  seperti anatomi dan histokimia merupakan teknik yang lebih umum dikenal dalam evaluasi dan  kontrol kualitas beberapa  bahan  pangan,  bumbu,  rempah-rempah, dan herbal medisin  (Umar et al., 2021a, 2021b; P. Kumar et al., 2022; Syahruni et al., 2023). Metode kombinasi anatomi dan histokimia untuk identifikasi pemalsuan  sampel A.  cepa , A.  ascalonicum ,  dan E .
bulbosa belum pernah dilaporkan sebelumnya. Oleh karena  itu,  penting  untuk  mengetahui  tindakan pencegahan pemalsuan dari ketiga sampel tersebut, baik dari segi pemanfaatannya sebagai bumbu atau obat  herbal,  dalam  bentuk  segar  maupun  bentuk serbuk  simplisia.  Analisis  anatomi  dan  histokimia menggunakan mikroskop cahaya harus dieksplorasi untuk  mengevaluasi  pengendalian  kualitas  bawang merah, bawang bombay merah, dan bawang dayak karena efektif, mudah, dan membutuhkan persiapan sampel  yang  minimal.  Secara  umum,  tujuan  dari penelitian  ini  yaitu  penerapan  teknik  anatomi  dan histokimia untuk identifikasi tahap awal terkait pola persamaan  dan  perbedaan  struktur  anatomi  serta golongan  metabolit  (kualitatif)  utama  dari  ketiga sampel segar yang digunakan.

## METODE

## 1. Uji anatomi dan histokimia
Sampel  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini, yaitu: Allium ascalonicum, Allium  cepa var. Aggregatum, dan Eleutherine bulbosa . Morfologi umbi lapis (bulbus) ketiga sampel bawang tersebut tersaji pada Gambar 1a–c . Sampel uji diperoleh dari daerah Malino  (1.500  mdpl),  Kabupaten  Gowa,  Provinsi Sulawesi  Selatan.  Sampel  ditanam  dengan  sistem konvensional (bedengan) yang dipanen pada kisaran umur  3  bulan  setelah  masa  tanam  (Januari– Februari).

## 2. Prosedur pengamatan mikroskopik
Sampel segar disayat menggunakan silet, sesuai dengan prosedur anatomi. Hasil sayatan diletakkan pada  medium  air:gliserin  (1:1  v/v)  30%  (P  &  G Chemicals, Buona Vista, Singapura) pada kaca objek, kemudian  ditutup  dengan  kaca  penutup.  Semua preparat  diamati  di  bawah  mikroskop  cahaya Olympus  CX23Led  (Olympus  Corporation,  Tokyo, Jepang),  dan  dokumentasi  gambar  menggunakan OptiLab Viewer® ver: 2.1.
Pereaksi  spesifik  (Merck,  Darmstadt,  Jerman) ( Tabel 1 ) digunakan untuk memverifikasi golongan senyawa utama pada sampel. Semua uji histokimia dilakukan tiga kali untuk mengkonfirmasi kebenaran setiap uji yang dilakukan.
Gambar 1 . Morfologi bulbus dari A. ascalonicum ( a ), A. cepa var. Aggregatum ( b ), dan E. bulbosa ( c )
Tabel 1 . Pereaksi spesifik yang digunakan untuk mengidentifikasi golongan senyawa utama pada sampel A. cepa , A. ascalonicum , dan E. bulbosa .
Pereaksi Metabolit Reaksi positif Sumber pustaka/acuan Dragendorff dan Wagner Alkaloid Kuning keemasan/jingga dan Merah kecoklatan (Brechú-Franco et al., 2016; Furr & Mahlberg, 1981) Besi klorida Fenolik Hitam kehijauan atau hitam (Johansen, 1940) Sudan III Lipofilik Jingga (Boix et al., 2012; Sass, 1951) NADI Minyak esensial dan terpenoid Biru dan ungu (David & Carde, 1964) Magnesium asetat Terpenoid Merah kecoklatan atau coklat kekuningan (Harborne, 1998)

## HASIL & PEMBAHASAN
1. Pengamatan anatomi
Sel  pada A.  cepa ( Gambar  2a,  2b ), A. ascalonicum ( Gambar  2c,  2d ),  dan E.  bulbosa ( Gambar 2e, 2f ), memiliki  pola dan struktur yang sama. Perbedaan hanya teridentifikasi pada ukuran, bentuk,  dan  jumlah  selnya. A.  cepa dan A. ascalonicum ( Gambar  2a,  2c )  memiliki  ukuran  sel dan bentuk kotak yang tidak seragam, sedangkan E. bulbosa ( Gambar  2e )  bentuk  dan  ukurannya  lebih seragam. Sel epidermis terbanyak, secara berurutan dimiliki oleh A. cepa , E. bulbosa , dan A. ascalonicum . Pada  epidermis  ketiga  sampel  sayatan  paradermal segar tersebut teridentifikasi inti sel, dinding sel, dan sitoplasma.  Ketiga  organel  sel  tersebut  umum ditemukan  pada Allium sp.  (Assani  et  al.,  2009; Ślusarczyk et al., 2015). Sitoplasma pada Allium sp., umumnya  berfungsi  sebagai  pengatur  kinetika dehidrasi osmotik (Assani et al., 2009).

## 2. Hasil uji histokimia
a. Alkaloid
Uji alkaloid menggunakan pereaksi Dragendorff pada sayatan  paradermal A. cepa ( Gambar 3a ), A.
ascalonicum ( Gambar 3b ), dan E. bulbosa ( Gambar 3c )  diidentifikasi  pada  sitoplasma  dan  dinding  sel. Dengan pereaksi Wagner , senyawa ini juga terdapat pada  sitoplasma  dan  dinding  sel A.  cepa ( Gambar 3d ), A.  ascalonicum ( Gambar  3e ),  dan E.  bulbosa ( Gambar 3f ).

## b. Fenolik
Sayatan paradermal ketiga sampel teridentifikasi adanya golongan fenolik. Pada A. cepa , senyawa ini teridentifikasi  di  dinding  sel  ( Gambar  4a ), sitoplasma pada A. ascalonicum ( Gambar 4b ), serta dinding sel pada E. bulbosa ( Gambar 4c ). Sitoplasma dilaporkan  menjadi  salah  satu  tempat  akumulasi metabolit  pada Allium sp.  (Bora  &  Sharma,  2009). Golongan  fenolik  juga  teridentifikasi  pada  ekstrak Allium sp. (Chakraborty et al., 2022; M. Kumar et al., 2022;  Marrelli  et  al.,  2019), A.  ascalonicum (Moldovan et al., 2022), dan E. bulbosa (Kamarudin et  al.,  2021).  Senyawa  fenolik  diakumulasi  pada Allium sp.,  sebagai  bentuk  adaptasi  terhadap lingkungan,  berupa  stres  osmotik  dan  kekeringan (Ghodke et al., 2020; Golubkina et al., 2023).
Gambar 2 . Anatomi dari sayatan paradermal bulbus A. cepa ( a dan b ), A. ascalonicum ( c dan d ), dan E. bulbosa ( e dan f ). Inti sel, sitoplasma, dan dinding sel (tanda panah) pada epidermis teridentifikasi dari masing-masing sampel. Sayatan ( a ) menggunakan pereaksi safranin O ( a , c , d , dan f ), metilen biru ( b dan e ). Singkatan: is = inti sel, ds = dinding sel, sp = sitoplasma.
Gambar 3 . Identifikasi golongan alkaloid pada A. cepa ( a dan d ), A. ascalonicum ( b dan e ), dan E. bulbosa ( c dan f ). Sayatan sampel yang positif mengandung alkaloid dengan menggunakan pereaksi Dragendorff ( a–c ) dan Wagner ( d–f ).
Gambar 4 . Identifikasi golongan fenolik menggunakan pereaksi besi klorida. Fenolik teridentifikasi di dinding sel pada A. cepa ( a ), sitoplasma pada A. ascalonicum ( b ), dan dinding sel pada E. bulbosa ( c ).

## c. Lipofilik
Lipofilik  teridentifikasi  di  dinding  sel  pada sayatan  paradermal A.  cepa ( Gambar  5a )  dan A. ascalonicum ( Gambar 5b ). Senyawa lipofilik ini tidak teridentifikasi pada E. bulbosa . Namun, Kamaruddin et al. (2021, 2022) melaporkan adanya kandungan senyawa  lipofilik  pada  ekstrak E.  bulbosa dan E. palmifolia. Pereaksi Sudan III, yang memiliki gugus azo (–N=N–) dan hidroksil (OH), digunakan untuk mengidentifikasi  steroid,  minyak,  dan  lemak  (zat nonpolar)  dalam  sampel  karena  afinitasnya  yang tinggi terhadap senyawa nonpolar, yang membentuk warna  jingga.  Rendahnya  kadar  senyawa  dalam sampel,  dapat  menyebabkan  tidak  terdeteksinya senyawa  tersebut.  Di  sisi  lain,  pereaksi  yang digunakan  dalam  pengujian  histokimia  mungkin
spesifik untuk senyawa kimia tertentu saja (Oliveira et al., 2018; Syahruni et al., 2023).

## d. Terpenoid
Terpenoid  teridentifikasi  di  sitoplasma  dari A. cepa ( Gambar 6a ), A. ascalonicum ( Gambar 6b ), dan E.  bulbosa ( Gambar  6c ).  Senyawa  ini  juga teridentifikasi pada ekstrak A. cepa (Fernandes et al., 2020), A.  ascalonicum (Raeisi  et  al.,  2016),  dan E. bulbosa (Kamarudin  et  al.,  2022;  Moldovan  et  al., 2022). Plastida, mitokondria, peroksisom, dan sitosol mejadi  tempat  biosintesis  dari  metabolit  sekunder (Wu  et  al.,  2021). Tabel  2 ,  merangkum  hasil identifikasi  histokimia,  kelompok  senyawa,  dan tempat  akumulasinya  pada  sampel A.  cepa , A. ascalonicum , dan E. bulbosa .
Gambar 5 . Identifikasi golongan lipofilik menggunakan pereaksi Sudan III pada A. cepa ( a ) dan A. ascalonicum ( b ). Senyawa ini teridentifikasi di dinding sel dari kedua sayatan paredermal sampel.
Tabel 2 . Reaksi histokimia sampel A. cepa , A. ascalonicum , dan E. bulbosa .
Pereaksi Senyawa
Warna Akumulasi Spesies A. cepa A. ascalonicum E. bulbosa Dragendorff Alkaloid Kuning keemasan /jingga
Sitoplasma
+
+
+ Dinding sel + + + Wagner Alkaloid Merah kecoklatan Sitoplasma +
+
+ Dinding sel + + + Besi klorida Fenolik Hitam kehijauan atau hitam Sitoplasma – + – Dinding sel + – + Sudan III Lipofilik Jingga Sitoplasma – – – Dinding sel + + – NADI Minyak esensial Biru Sitoplasma – – – Dinding sel – – – Terpenoid Ungu Sitoplasma + + + Dinding sel – – – Magnesium asetat Terpenoid Merah kecoklatan atau coklat kekuningan Sitoplasma – – – Dinding sel – – –
+ = reaksi positif, – = reaksi negatif
Gambar 6 . Identifikasi golongan terpenoid menggunakan pereaksi NADI. Senyawa ini teridentifikasi pada sitoplasma yang ditandai dengan warna ungu dari A. cepa ( a ), A. ascalonicum ( b ), dan E. bulbosa ( c ).

## KESIMPULAN
Semua sampel secara anatomi memiliki organel sel (inti sel, sitoplasma, dan dinding sel) yang sama, namun ukuran, bentuk, dan jumlah selnya berbeda. A. cepa dan A. ascalonicum memiliki ukuran sel dan bentuk  kotak  yang  tidak  seragam,  sedangkan E. bulbosa lebih seragam. Secara histokimia, dinding sel dan  sitoplasma  dari  sampel Allium sp. mengakumulasi  alkaloid,  fenolik,  lipofilik,  dan terpenoid, sedangkan E. bulbosa , hanya mengandung alkaloid, fenolik, dan terpenoid.

## DAFTAR PUSTAKA
Assani,  A.,  Moundanga,  S.,  Beney,  L.,  &  Gervais,  P. (2009). Vesicle formation in the membrane of onion cells ( Allium cepa ) during rapid osmotic dehydration. Annals of Botany , 104 (7), 1389–1395. https://doi.org/10.1093/aob/mcp256
Boix, Y. F., Victório, C. P., Defaveri, A. C. A., Arruda, R. D. C. D. O., Sato, A., & Lage, C. L. S. (2012). Glandular trichomes of Rosmarinus officinalis L.: Anatomical and phytochemical analyses of leaf volatiles. Plant Biosystems , 145 (4), Article 4. https://doi.org/10.1080/11263504.2011.584075
Bora,  K.  S.,  &  Sharma,  A.  (2009).  Phytoconstituents  and therapeutic  potential  of Allium  cepa Linn.–  A  review. Pharmacognosy Reviews , 3 (5), 170–180.
Brechú-Franco,  A.  E.,  Laguna-Hernández,  G.,  De  la  Cruz- Chacón,  I.,  &  González-Esquinca,  A.  R.  (2016).  In  situ histochemical localisation of alkaloids and acetogenins in the  endosperm  and  embryonic  axis  of Annona macroprophyllata Donn.  Sm.  Seeds  during  germination. European  Journal  of  Histochemistry , 60 (1),  Article  1. https://doi.org/10.4081/ejh.2016.2568
Chakraborty, A. J., Uddin, T. M., Matin Zidan, B. M. R., Mitra, S., Das, R., Nainu, F., Dhama, K., Roy, A., Hossain, M. J., Khusro, A., & Emran, T. B. (2022). Allium cepa : A treasure of  bioactive  phytochemicals  with  prospective  health benefits. Evidence-Based  Complementary  and  Alternative Medicine , 2022 , 4586318. https://doi.org/10.1155/2022/4586318
David,  R.,  &  Carde,  J.  (1964).  Histochimie—Coloration differentielle des inclusions lipidiques et terpeniques des pseudophylles du pin maritime au moyen du reactif Nadi. Comptes Rendus Hebdomadaires Dês Séances de I’ Academie Dês Sciences Paris , 258 , 1338–1340.
Destanoglu, O. (2022). Discrimination and authentication of geographical  origin  of  Turkish  Taşköprü  garlic  by investigating volatile organosulfur compound profiles and multivariate analyses. Turkish Journal of Chemistry , 46 (4), 1152–1163. https://doi.org/10.55730/1300-0527.3423 Fernandes, S., Gois, A., Mendes, F., Perestrelo, R., Medina, S., & Câmara,  J.  S. (2020). Typicality  assessment of onions ( Allium cepa ) from different geographical regions based on the volatile signature and chemometric tools. Foods , 9 (3), Article 3. https://doi.org/10.3390/foods9030375 Furr, M., & Mahlberg, P. G. (1981). Histochemical analyses of laticifers  and  glandular  trichomes  in Cannabis  sativa . Journal  of  Natural  Products , 44 (2),  Article  2. https://doi.org/10.1021/np50014a002
Ghodke,  P.,  Khandagale,  K.,  Thangasamy,  A.,  Kulkarni,  A., Narwade, N., Shirsat, D., Randive, P., Roylawar, P., Singh, I., Gawande, S. J., Mahajan, V., Solanke, A., & Singh, M.
(2020). Comparative transcriptome analyses in contrasting onion ( Allium cepa L.) genotypes for drought stress. PLOS ONE , 15 (8), e0237457.
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0237457
Golubkina,  N.,  Romanova,  O.,  Romanov,  V.,  Krivenkov,  L., Shevchenko, T., Murariu, O. C., Vecchietti, L., Hamburda, S. B., & Caruso, G. (2023). Varietal differences of yield, morphological, and biochemical parameters of Allium cepa L.  under  precipitation  excess  in  different  phenological phases. Stresses , 3 (3), Article 3. https://doi.org/10.3390/stresses3030038
Harborne,  J.  B.  (1998). Phytochemical  methods:  A  guide  to modern techniques of plant analysis (2nd ed.). Chapman &
Hall.
Johansen,  D.  A.  (1940). Plant  microtechnique .  McGraw-Hill Publications Book Company.
Kadam, P. V., Yadav, K. N., Karjikar, F. A., Patel, F. A., Patidar, M.  K.,  &  Patil,  M.  J.  (2013).  Pharmacognostic, phytochemical  and  physicochemical  studies  of Allium sativum Linn.  Bulb  (Liliaceae). International  Journal  of Pharmaceutical Sciences and Research , 4 (9), 3524–3531. Kamarudin, A. A., Sayuti, N. H., Saad, N., Razak, N. A. A., & Esa,  N.  M.  (2021). Eleutherine  bulbosa (Mill.)  Urb.  Bulb: Review of the pharmacological activities and its prospects for application. International Journal of Molecular Sciences , 22 (13), Article 13. https://doi.org/10.3390/ijms22136747
Kamarudin, A. A., Sayuti, N. H., Saad, N., Razak, N. A. A., & Esa,  N.  M.  (2022).  Induction  of  apoptosis  by Eleutherine bulbosa (Mill.)  Urb.  Bulb  extracted  under  optimised extraction condition on human retinoblastoma cancer cells (WERI-Rb-1). Journal of Ethnopharmacology , 284 , 114770. https://doi.org/10.1016/j.jep.2021.114770 Kim, J.-H., & Baik, S.-H. (2016). Molecular identification of economically motivated adulteration of red pepper powder by  species-specific  PCR  of  nuclear  rDNA-ITS  regions  in garlic  and  onion. Food  Analytical  Methods , 9 (12),  3287– 3297. https://doi.org/10.1007/s12161-016-0519-1
Kumar, M., Barbhai, M. D., Hasan, M., Punia, S., Dhumal, S., Radha, Rais, N., Chandran, D., Pandiselvam, R., Kothakota, A.,  Tomar,  M.,  Satankar,  V.,  Senapathy,  M.,  Anitha,  T., Dey, A., Sayed, A. A. S., Gadallah, F. M., Amarowicz, R., & Mekhemar,  M.  (2022).  Onion  ( Allium  cepa L.)  peels:  A review on bioactive compounds and biomedical activities. Biomedicine  &  Pharmacotherapy , 146 ,  112498. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2021.112498
Kumar,  P.,  Bhushan,  A.,  Gupta,  P.,  &  Gairola,  S.  (2022). Comparative  morpho-anatomical  standardization  and chemical profiling of root drugs for distinction of fourteen species of family Apocynaceae. Botanical Studies , 63 (1), 12. https://doi.org/10.1186/s40529-022-00342-z
Lee,  M.-S.,  Su,  T.-Y.,  Lien,  Y.-Y.,  &  Sheu,  S.-C.  (2017).  The development  of  loop-mediated  isothermal  amplification (LAMP)  assays  for  the  rapid  authentication  of  five forbidden  vegetables  in  strict  vegetarian  diets. Scientific Reports , 7 (1), Article 1. https://doi.org/10.1038/srep44238
Marrelli,  M.,  Amodeo,  V.,  Statti,  G.,  &  Conforti,  F.  (2019). Biological properties and bioactive components of Allium cepa L.:  Focus  on  potential  benefits  in  the  treatment  of obesity and related comorbidities. Molecules , 24 (1), Article 1. https://doi.org/10.3390/molecules24010119
Moldovan, C., Frumuzachi, O., Babotă, M., Barros, L., Mocan, A., Carradori, S., & Crişan, G. (2022). Therapeutic uses and pharmacological properties of shallot ( Allium ascalonicum ): A  systematic  review. Frontiers  in  Nutrition , 9 ,  903686. https://doi.org/10.3389/fnut.2022.903686
Oliveira, J. P. S., Hakimi, O., Murgu, M., Koblitz,  M. G. B., Ferreira, M. S. L., Cameron, L. C., & Macedo, A. F. (2018). Tissue  culture  and  metabolome  investigation  of  a  wild endangered  medicinal  plant  using  high  definition  mass spectrometry. Plant Cell, Tissue and Organ Culture , 134 (1),
Article 1. https://doi.org/10.1007/s11240-018-1408-7
Raeisi,  S.,  Sharifi-Rad,  M.,  Quek,  S.  Y.,  Shabanpour,  B.,  &
Sharifi-Rad,  J.  (2016).  Evaluation  of  antioxidant  and antimicrobial effects of shallot ( Allium ascalonicum L.) fruit and  ajwain  ( Trachyspermum  ammi (L.)  Sprague)  seed extracts in semi-fried coated rainbow trout ( Oncorhynchus mykiss ) fillets for shelf-life extension. LWT - Food Science and Technology , 65 , 112–121. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2015.07.064
Sass, J. E. (1951). Botanical microtechnique (2nd ed.). The Iowa State College Press; Constable & Co.
Saviano, G., Paris, D., Melck, D., Fantasma, F., Motta, A., &
Iorizzi,  M.  (2019).  Metabolite  variation  in  three  edible Italian Allium  cepa L.  by  NMR-based  metabolomics:  A comparative study in fresh and stored bulbs. Metabolomics ,
15 (8), 105. https://doi.org/10.1007/s11306-019-1566-6 Ślusarczyk,  J.,  Wierzbicka,  M.,  Suchocki,  P.,  &  Kuraś,  M.
(2015). Ultrastructural changes in onion ( Allium cepa L.)
root  tip  meristem  cells  treated  with  selol  and  sodium selenate (IV).
Caryologia , 68 (4), 306–316. https://doi.org/10.1080/00087114.2015.1109934
Syahruni, R., Umar, A. H., Todingbua, D., Semba, Y., Irmawati, D.,  &  Ratnadewi,  D.  (2023).  Morphology,  anatomy,  and histochemistry of three species of Jatropha : A contribution to plant recognition and selection. Plant Biology , n/a (n/a). https://doi.org/10.1111/plb.13567
Umar, A. H., Ratnadewi, D., Rafi, M., Sulistyaningsih, Y. C., & Hamim, H. (2021a). Callus of Curculigo latifolia Dryand. Ex W.T.Aiton: Initiation, regeneration, secretory structure and histochemistry. IOP  Conference  Series:  Earth  and
Environmental
Science , 948 (1), Article 1. https://doi.org/10.1088/1755-1315/948/1/012051
Umar, A. H., Ratnadewi, D., Rafi, M., Sulistyaningsih, Y. C., & Hamim, H. (2021b). Metabolite profiling, distribution of
secretory  structures,  and  histochemistry  in Curculigo orchioides Gaertn.  And Curculigo  latifolia Dryand.  Ex W.T.Aiton. Turkish  Journal  of  Botany , 45 (5),  421–439. https://doi.org/10.3906/bot-2009-43
Wu, T., Kerbler, S. M., Fernie, A. R., & Zhang, Y. (2021). Plant cell  cultures  as  heterologous  bio-factories  for  secondary metabolite  production. Plant  Communications , 2 (5), 100235. https://doi.org/10.1016/j.xplc.2021.100235
Citation Format : Syahruni, R., Umar, A. H., & Halim, N. A. R. (2024). Anatomy and Histochemistry of Alliaceae  and  Iridaceae  Species:  Quality  Control  of  Traditional  Medicine  Raw  Materials. Jurnal  Jamu Indonesia, 9(1), 31–40. https://doi.org/10.29244/jji.v9i1.309