Penulis Puspita Sari 1  , Purwantiningsih Sugita 1 , Adi Santoso 2
Afiliasi
1 Departemen  Kimia,  Fakultas  Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam,  IPB  University,  Bogor, Jawa Barat, 16680, Indonesia.
2 Puslitbang Hasil Hutan, Bogor, Indonesia.
Kata Kunci  BSLT
 Difusi agar
 DPPH
 Schleichera oleosa (Lour) oken

## Keywords
 BSLT
 Agar diffusion
 DPPH
 Schleichera oleosa
( Lour ) oken
Diterima 17 Juli 2019
Direvisi 24 September 2019 Disetujui 11 Oktober 2019 *Penulis Koresponding
Puspita Sari email: cincin.dunia@gmail.com

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk membandingkan aktivitas antioksidan, antibakteri, dan uji toksisitas dari berbagai jenis ekstrak kulit batang pohon kesambi ( Schleichera oleosa (Lour)Oken ).  Tahapan  penelitian  meliputi  proses  esktraksi  kulit  batang  kesambi  dari kecamatan Mancak Serang dengan teknik maserasi bertingkat menggunakan 3 pelarut : Metanol, n-heksan, dan etil asetat. Ekstrak tersebut kemudian diuji aktivitas antioksidan, antibakteri,  dan  toksisitasnya.  Hasil  pengujian  antioksidan  dengan  metode  DPPH, antibakteri  dengan  metode  difusi  agar,  dan  uji  toksisitas  dengan  metode  BSLT  didapat hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  ekstrak  etil  asetat  memiliki  aktivitas  antioksidan (IC50  7,723  ppm)  yang  lebih  baik  dibandingkan  dengan  ekstrak  metanol  (IC50  7,801 ppm), dan ekstrak n-heksan (IC50 8,568 ppm). Aktivitas antibakteri menunjukkan adanya kemampuan  untuk  menghambat  pertumbuhan  bakteri Streptococcus  aureus dibandingkan bakteri Escherichia coli pada konsentrasi 10000 ppm, dan hasil uji toksisitas menunjukkan  bahwa  ekstrak  etil  asetat  memiliki  aktivitas  yang  lebih  baik  (LC50  305,17 ppm)  dibandingkan  ekstrak  n-heksan  (LC50  374,96  ppm)  dan  ekstrak  metanol  (LC50 431,26 ppm).

## ABSTRACT
This  study  aimed  to  compare  antioxidant,  antibacterial  and  toxicity  tests  of  various types of kesambi tree bark extract (Schleichera oleosa (Lour) Oken). The research stages included extraction of kesambi stem skin from Mancak Serang sub-district with multilevel maceration  techniques  using  3  solvents:  Methanol,  n-hexane,  and  ethyl  acetate.  The extract was then tested for antioxidant activity, antibacterial, and toxicity. The results of antioxidant  testing  using  the  DPPH  method,  antibacterial  with  agar  diffusion  method, and  toxicity  test  with  BSLT  method,  the  results  showed  that  ethyl  acetate  extract  had better  antioxidant  activity  (IC50  7,723  ppm.)  compared  to  extract  of  methanol  (IC50 7,801  ppm),  and  n-hexane  extract  (IC50  8,568  ppm).  Antibacterial  activity  showed  the ability  to  inhibit  the  growth  of  Streptococcus  aureus  compared  to  Escherichia  coli  at  a concentration of 10000 ppm, and the results of the toxicity test showed that ethyl acetate extract had better activity (LC50 305,17 ppm) than n-hexane extract (LC50 374, 96 ppm) and methanol extract (LC50 431,26 ppm).
Aktivitas Antioksidan, Antibakteri, dan Toksisitas Ekstrak Kulit Batang Pohon Kesambi ( Schleichera oleosa (Lour) Oken )
Antioxcidant, Antibacterial Activity and Toxicity of Kesambi (Schleichera Oleosa (Lour) Oken) Brak Extracts
Aktivitas Antioksidan, Antibakteri, dan Toksisitas Ekstrak Kulit Batang Pohon Kesambi ( Schleichera oleosa ( Lour ) Oken )

## PENDAHULUAN
Saat ini masyarakat mulai beralih pada pengobatan tradisional  dengan  bahan-bahan  alami.  Penggunaan obat  tradisional  atau  lebih  dikenal  dengan  istilah  obat herbal  pada  akhir-akhir  ini  terus  meningkat.  Hal  ini didukung  dengan  adanya  isu back  to  nature dalam memanfaatkan  bahan-bahan  alami  sebagai  obat (Santoso.  2008).  Salah  satu  tanaman  yang  dapat digunakan sebagai pengobatan herbal adalah kesambi. Secara  tradisional,  bagian  dari  tanaman  kesambi  telah digunakan  untuk  pengobatan  seperti  penyakit  kulit, disentri,  gigitan  ular  dan  dilaporkan  memiliki  sifat antioksidan dan antijamur (Mallik et al . 2012 dan Patra et  al .  2012),  ada  juga  penelitian  yang  melaporkan bahwa tanaman kesambi memiliki aktivitas antimikroba dari  ekstrak  serta  senyawa  murni  yang  diisolasi  dari fraksi  yang  kurang  polar  (Bhatia et  al .  2013).  Kesambi selain  bisa  dimanfaatkan  sebagai  obat,  tanaman  ini juga mengandung vitamin C tinggi sebagai antioksidan (Suita  2012).  Berdasarkan  penelitian  sebelumnya terhadap  buah  kesambi  dari  tiga  ekstrak  yakni  ekstrak n-heksana, etil asetat dan air memberikan nilai aktivitas antioksidan  menggunakan  metode  DPPH  dengan persentase  berturut-turut  60,91;  43,53;  dan  34,94% (Thatavong.  2015).  Penggunaan  kayu  kesambi  di daerah Timor Indonesia digunakan untuk menekan laju pertumbuhan  bakteri E.  coli (Susilawati et  al .  2016), sedangkan  menurut  Daun  (1979)  asap  pembakaran kayu kesambi mengandung senyawa fenol yang bersifat bakteriosidal. Berdasarkan penelitian Uyun (2016) hasil uji fitokimia ekstrak kulit batang kesambi menunjukkan bahwa  positif  mengandung  golongan  senyawa triterpenoid, fenolik, alkaloid, dan flavonoid serta kulit batang  kesambi  mempunyai  aktivitas  antibakteri terhadap bakteri Staphylociccus aureus pada konsentrasi 1000 ppm menghasilkan zona hambat 14,1 mm. Penelitian Susilawati et al . 2016 juga menyatakan bahwa ekstrak kasar kulit batang kesambi berpengaruh sangat  nyata  (p<0.005),  jika  dibandingkan  dengan kontrol,  dalam  menghambat  bakteri E-coli secara in vitro dengan  diameter  zona  hambat  yang  berkisar antara 10.33 ± 0.58 mm dan 21.6 ± 1.2 mm. Ghosh et al. 2011 melaporkan bahwa ekstrak methanol kulit luar batang kesambi berasal dari kaki bukit Darjeeling India teridentifikasi  dua  senyawa  triterpenoid  yaitu, taraxeron  dan asam  trisadenik  A. Walaupun  demikian, penelitian  tentang  komponen  senyawa  aktif  kulit ekstrak  kulit  batang  kesambi  di  Indonesia  masih terbatas,  begitu  pula  penelitian  ekstrak  kulit  batang dari  tumbuhan  yang  sama  genus  dan  family  dengan
kesambi masih amat terbatas, pengujian sebatas hanya pada  ekstrak  kasarnya.  Faktor  perbedaan  tempat tumbuh suatu tanaman dapat mempengaruhi jenis dan jumlah  kandungan  senayawa  di  dalamnya,  sehingga memungkinkan adanya metabolit sekunder yang belum ditemukan. Oleh karena itu, tujuan penelitian ini adalah mengisolasi dan mengkarakterisasi komponen senyawa kulit  batang  kesambi.  Isoalasi  dilakukan  melalui  teknik bioassay guided, assay yang dilakukan adalah pengujian antioksidan,  antibakteri,  dan  sitotoksis  BSLT.  Senyawa yang  dilanjutkan  karakterisisasi  strukturnya  adalah senyawa  terpilih  yang  memiliki  sifat  antioksidan  dan antibakteri kuat tetapi tidak toksis.

## METODE
Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Pusat Studi Biofarmaka  Tropika  LPPM  IPB  Bogor  dan  di Laboratorium  Sekolah  Tinggi  Analis  Kimia  (STAK) Ciategon.  Proses  awal  pembuatan  esktrak  adalah penyiapan serbuk simplisia kering. Sampel kulit batang kesambi  dikeringkan  dalam  ruangan  dengan  suhu ruang.  Setelah  kering,  semua  kulit  batang  kesambi  di haluskan hingga menjadi serbuk berukuran 60 mesh.
Proses  ekstraksi  menggunakan  metode  maserasi. Pada  proses  awal,  sampel  (3,790  kg)  direndam  meng- gunakan pelarut metanol 96%  sebanyak 16,4 L selama 3x24  jam  dengan  dilakukan  pengadukan  sesekali, kemudian  disaring  (Ajilye et  al. ,  2015).  Filtrat  yang dihasilkan  lalu  dievaporasi  sampai  diperoleh  ekstrak kental metanol kulit kesambi. Ekstrak kental kemudian difraksinasi  dengan  n-heksan  dan  etil  asetat  secara berturut-turut sebanyak 100 mL dan dipisahkan dengan menggunakan  corong  pisah.  Setelah  didapat  3  fraksi yaitu fraksi metanol, n-heksan dan etil asetat dilakukan pengujian antioksidan, antibakteri, dan bioaktivitas.
Metode  uji  antioksidan  yang  digunakan  adalah DPPH dengan asam askorbat sebagai kontrol positif dan etanol sebagai blanko (Batubara et al . 2009). Sebanyak 100 µL sampel dan 100 µL DPPH (5mg DPPH dalam 100 mL  etanol)  masing-masing  ditambahkan  pada  sumur mikroplate .  Setelah  inkubasi  selama  30  menit,  diukur absorbansinya  pada  panjang  gelombang  517  nm  dan kemudian dihitung aktivitas penghambatnya.
Pengujian  antibakteri  dilakukan  dengan  metode difusi agar (Tillah et al . 2017) terhadap S. aureus (ATTC 6538)  dan E.  coli (ATTC  25922)  diinkubasi  pada  suhu 37 o C  selama  24  jam  dalam  medium  cair.  Selanjutnya medium  agar  ditambahkan  dengan  inokulum  bakteri dan  ditempatkan  ke  dalam  cawan  Petri  lalu  dibiarkan hingga  memadat.  Kemudian  ke  dalam  medium  yang
Sari et al . telah padat dimasukkan kertas cakram Whatman 6 mm sebanyak 6 buah, 4 buah kertas cakram ditetesi 20 µL larutan  sampel  dengan  berbagai  konsentrasi  (20.000; 10.000;  5000;  2500  ppm),  sisanya  ditetesi  dengan kontrol  positif  (tetrasiklin  1000  ppm)  dan  kontrol negatif (DMSO 20%). Kemudian cawan Petri diinkubasi pada  suhu  37 o C  selama  24  jam,  lalu  diukur  zona hambat yang terbentuk.
Pengujian toksisitas dilakukan dengan menggunakan metode Brine Shrimp Lethality Test (BSLT) menggunakan larva udang Artemia salina Leach. sebagai  objek  pengamatan.  Sebanyak  20  mg sampel  dicampurkan  dengan  air  laut  sebanyak  10  mL, lalu dihomogenkan (stok sampel 2000 ppm). Sebanyak 1000 µL air laut berisi larva udang 10 ekor dimasukkan ke  dalam  vial  uji  ukuran  2000  µL,  kemudian  diberi larutan  sampel  dengan  konsentrasi  berturut-turut 1000,  500,  100,  dan  10  µL  yang  sudah  dibuat  dari larutan  stok  sampel  2000  ppm,  didiamkan  selama  24 jam.  Aktivitas  bioaktivitas  ekstrak  ditunjukkan  oleh jumlah  larva  yang  mati  dibandingkan  blanko.  Nilai bioaktivitas ditunjukkan dengan istilah Lethal Concentration (LC50)

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Kulit batang kesambi dipotong sampai diameter ± 2 cm  kemudian  di  haluskan  hingga  menjadi  serbuk berukuran  60  mesh.  Sampel  tersebut  terlebih  dahulu dikeringkan  pada  suhu  kamar.  Kulit  batang  kesambi hasil pengeringan didapatkan berat sebanyak 3,790 kg. Kulit  batang  kesambi  yang  sudah  kering  kemudian dimaserasi  menggunakan  metanol  96%  selama  3  x  24 jam. Hasil maserasi dievaporasi diperoleh ekstrak pekat sebanyak  211,4  g,  selanjutnya  difraksinasi  dengan  n- heksana  dan  etil  asetat.  Dari  perlakukan  ini  diperoleh masing-masing  fraksi  n-heksana  (13  mg),  fraksi  etil
asetat (633,7 mg) dan fraksi residu metanol (6,0455 g).
Dalam  pengujian  antioksidan  digunakan  asam askorbat  (vitamin  C)  sebagai  kontrol  positif,  pengujian antioksidan menggunakan berbagai konsentrasi berturut-turut 20 ppm, 10 ppm, 5 ppm, 2,5 ppm, 1,25 ppm,  0,625  ppm,  0,3125  ppm.  Adapun  hasil  dari  % inhibisi  masing-masing  konsentrasi  dari  keempat ekstrak dapat dilihat pada Tabel 1. Ekstrak kulit batang kesambi memiliki nilai % Inhibisi berkisar 3,35 % hingga 86,61  %.  Untuk  mendapatkan  nilai  IC 50 berdasarkan persamaan  grafik  hubungan  antara  konsentrasi terhadap  %  Inhibisi  dapat  dilihat  pada  Tabel  2,  kulit batang  kesambi  memiliki  nilai  IC 50 berkisar  3,061±0,29 ppm  hingga  4,47±0,27  ppm.  Hal  ini  menunjukkan bahwa  kulit  batang  kesambi  memiliki  aktivitas antioksidan  kuat  karena  nilai  IC 50 dibawah  50  ppm (Tristantini et al . 2016).
Perbedaan  nilai  IC 50 ini  dapat  disebabkan  oleh jumlah  antioksidan  yang  terkandung  didalam  ekstrak. Nilai  IC 50 merupakan  konsentrasi  efektif  yang dibutuhkan  untuk  meredam  50  %  dari  total  DPPH.  Uji aktivitas  antioksidan  ekstrak  kulit  batang  kesambi menggunakan metode DPPH, karena metode ini sangat sederhana,  mudah,  cepat,  dan  peka  serta  hanya memerlukan  sedikit  sampel  untuk  mengevaluasi aktivitas  antioksidan  dari  senyawa  bahan  alam (Molyneux, 2014).
Hasil  skrining  fitokimia  menunjukkan  bahwa  fraksi etil  asetat  lebih  banyak  mengandung  senyawa (triterpen, flavonoid, steroid, dan fenolik) dibandingkan dengan  fraksi  n-heksana  (triterpen  dan  steroid)  dan ekstrak metanol (flavonoid, fenolik dan triterpen). Pada penelitian Thind et al . 2009 dilakukan analisis fitokimia kualitataif menunjukkan adanya senyawa flavonoid dan alkaloid  pada  kulit  kayu  kesambi.  Dari  hasil  skrining tersebut  diduga  aktivitas  antioksidan  pada  fraksi  etil
Tabel 1. Hasil Perhitungan % Inhibisi Antioksidan Ekstrak Kasar dan Fraksi Kulit Batang Kesambi
Konsentrasi Ekstrak Fraksi Fraksi Fraksi Kasar  Metanol n-Heksana Etil asetat Residu (ppm) (%) (%) (%) (%) 20 86,61 84,76 84,45 86,51 10 83,27 80,69 84,24 84,59 5 56,49 47,15 64,25 63,90 2,5 31,80 24,60 29,90 40,03 1,25 15,48 11,98 10,70 26,32 0,625 8,99 8,54 9,70 12,61 0,3125 3,35 4,47 5,66 5,23
Aktivitas Antioksidan, Antibakteri, dan Toksisitas Ekstrak Kulit Batang Pohon Kesambi ( Schleichera oleosa ( Lour ) Oken )
asetat  kulit  batang  kesambi  disebabkan  oleh  adanya senyawa  flavonoid.  Senyawa  flavonoid  merupakan senyawa  polifenol  mempunyai  kemampuan  untuk menyumbangkan  atom  hidrogen  kepada  senyawa radikal  bebas,  aktivitas  antioksidan  senyawa  polifenol dapat  dihasilkan  pada  reaksi  netralisasi  radikal  bebas atau  pada  penghentian  reaksi  berantai  yang  terjadi (Yuhernita dan Juniarti, 2011).
Aktivitas  antibakteri  ekstrak  kulit  batang  kesambi ditetapkan  menggunakan  metode  difusi  agar  (Tillah et al .  2017)  terhadap S.  aureus (ATTC  6538)  dan E.  coli (ATTC  25922).  Hasil  uji  antibakteri  dapat  dilihat  pada Tabel  3  menunjukkan  bahwa  ekstrak  kulit  batang kesambi  dapat  menghambat  pertumbuhan  bakteri S. Aureus ,  tetapi  tidak  dapat  menghambat  pertumbuhan E.  coli .  Hal  ini  diperkirakan  karena  agen  antibakteri dalam  ekstrak  kulit  batang  kesambi  tidak  mampu
melakukan penetrasi pada lapisan lipopolisakarida yang dimiliki  dinding  sel  bakteri  Gram  negatif  ( E.  coli ), sedangkan  pada  dinding  sel  bakteri S.  aureus mempunyai  asam  teikhoat  yang  sederhana  yang memungkinkan  untuk  agen  antibakteri  dalam  ekstrak melakukan  penetrasi. E.  coli juga  mempunyai peptidoglikan  tetapi  tipis  dan  letaknya  diantara  dua membrane.
Hasil  zona  bening  yang  di  dapat  dengan menggunakan  bakteri S.  aureus fraksi  n-heksan  tidak memiliki  aktivitas  antibakteri  dikarenakan  tidak menghasilkan  zona  bening,  sedangkan  untuk  ekstrak metanol,  fraksi  etil  asetat  dan  residu  didapat  zona bening  masing  masing  7,73  mm  (indeks  daya  hambat 1,73 mm), 8,36 mm (indeks daya hambat 2,36 mm) dan 7,43 mm (indeks daya hambat 1,43 mm).
Tabel 2. Hasil Nilai IC 50 Antioksidan Ekstrak Kasar dan Fraksi Kulit Batang Kesambi
Sampel a b Inx IC 50 (ppm) Ekstrak Kasar 22,25 21,11 1,32 3,74 ± 0,07 Fraksi n-heksana 21,66 17,61 1,50 4,47 ± 0,27 Fraksi Etil asetat 22,62 20,53 1,30 3,68 ± 0,08 Residu Metanol 21,92 25,51 1,12 3,06 ± 0,29 Vitamin C 24,94 21,97 1,12 3,10 ± 0,02
Tabel 3. Aktivitas  antibakteri  Ekstrak  Kulit  Batang  Kesambi  terhadap S.  aureus (ATTC  6538)  dan E.  coli (ATTC 25922) menggunakan metode difusi agar
Sampel Zona bening (mm) pada konsentrasi ekstrak (ppm) S. Aureus 20.000 10.000 5000 2500 K+ K- Ekstrak Kasar Metanol 7,73 - - - 28,30 6,00 Fraksi n- heksana - - - - 29,62 6,00 Fraksi Etil asetat 8,36 - - - 28,12 6,00 Fraksi Residu 7,48 - - - 28,44 6,00 E. coli Ekstrak Kasar Metanol - - - - 18,33 6,00 Fraksi n- heksana - - - - 18,28 6,00 Fraksi Etil asetat - - - - 18,10 6,00 Fraksi Residu - - - - 18,34 6,00
(-) tidak terdeteksi (K+) kontrol positif (tetrasiklin 1000 ppm) (K-) kontrol negatif (DMSO 20%)
Uji  aktivitas  antibakteri  menunjukkan  fraksi  etil asetat  memiliki  zona  penghambat  tinggi  terhadap S. aureus pada konsentrasi 20.000 ppm sebesar 8,36 mm. Pada  penelitian  Situmeang et  al .,  2019  didapat  zona hambat  pada  ekstrak  etil  asetat  yaitu  8,9  ppm  pada konsentrasi  5000  ppm,  sedangkan  pada  penelitian Prasetya et al. (2017) biji kelengkeng memiliki aktivitas antibakteri S.  aureus pada  konsentrasi  100.000  ppm sebesar 14,59 mm pada ekstrak etil asetat. Pengukuran kekuatan antibakteri telah dikemukakan oleh Davis dan Stout  (1971)  bila  diameter  daerah  hambatan  5  mm atau kurang maka aktifitas penghambatannya dikategorikan  lemah,  5-10  mm  dikategorikan  sedang, 10-19  mm  dikategorikan  kuat,  dan  20  mm  atau  lebih dikategorikan  sangat  kuat.  Dengan  demikian  dapat dikatakan  bahwa  fraksi  etil  asetat  dari  kulit  batang kesambi memiliki kekuatan menghambat pertumbuhan bakteri  sedang  pada  konsentrasi  20000  ppm.  Hasil skrining  fitokimi  menunjukkan  bahwa  fraksi  etil  asetat lebih  banyak  senyawa  (triterpen,  flavonoid,  steroid, dan  fenolik)  dibandingkan  dengan  fraksi  n-heksana (triterpen dan steroid) dan ekstrak metanol (flavonoid, fenolik  dan  triterpen).  Dari  hasil  skrining  tersebut diduga aktivitas antibakteri pada fraksi etil asetat  kulit batang  kesambi  disebabkan  oleh  adanya  senyawa flavonoid  dan  fenolik.  Flavonoid  dapat  menghambat pertumbuhan  bakteri S.  aureus dengan  cara menggangu  permeabilitas  dinding  sel  bakteri,  dengan terganggunya dinding sel akan menyebabkan lisis pada
sel (Dewi, 2010). sedangkan menurut Pelczar dan Chan (1988) senyawa fenolik mampu membunuh mikroorganisme  dengan  cara  mendenaturasi  protein sel.  Pada  penelitian  sebelumnya  menunjukkan,  bahwa ekstrak  etanol  70%  kulit  batang  kesambi  memiliki aktivitas  antibakteri  terhadap S.  aureus secara in  vitro dengan  konsentasi  6,25%  (Fernandez,  2014),  senyawa triterpenoid dari kulit batang kesambi yaitu taraxerone dan triacadenic  A memiliki  aktivitas  antibakteri terhadap S. aureus (Ghosh et al ., 2011).
Toksisitas  dilakukan  dengan  menggunakan  metode Brine  Shrimp  Lethality  Test (BSLT)  menggunakan  larva udang Artemia salina Leach sebagai obyek pengamatan.  Larva  udang  (Baugaard  2013).  Tabel  4 menunjukkan  hasil  yang  diperoleh  pada  pengujian bioaktivitas  dengan  metode  BSLT.  Berdasarkan  data hasil  uji  bioaktivitas  pada  tabel  tersebut  dapat diketahui bahwa kulit batang kesambi baik dari ekstrak kasar,  fraksi  n-heksana,  fraksi  etil  asetat,  dan  fraksi residu memberikan nilai LC50 < 1000 ppm yang berarti masuk  dalam  kategori  aktif  atau  toksis.  Menurut Deskawati  (2015)  bila  nilai  LC50  <  1000  ppm  untuk ekstrak  kasar  masuk  dalam  kategori  aktif  atau  toksis, dan  jika  LC50  >  1000  ppm  masuk  dalam  kategori  non toksis.
Uji  toksisitas  pada  ekstrak  tanaman  biasanya dilakukan  untuk  megetahui  tingkat  keamanan  suatu ekstrak  dan salah satu prasyarat suatu tanaman dapat dikembangkan  sebagai  obat  dan  produk  lainnya. Penelitian  Trimedona et  al .  2015  menunjukkan  bahwa
Tabel 4. Hasil Uji Toksisitas Ekstrak Kasar dan Fraksi Kulit Batang Kesambi dengan metode BSLT
Sampel Konsentrasi Log AM AH Mortalitas LC50 (ppm) Konsentrasi (%) (ppm) Ekstrak  Kasar Metanol 10 1 5 70 6,67 950,63 100 2 22 45 32,84 500 1,4 30 32 48,39 1000 3 50 10 83,33 Fraksi  Residu Metanol 10 1 4 49 7,55 1047,08 100 2 28 23 54,90 500 1,4 43 17 71,67 1000 3 71 2 97,26 Fraksi Etil Asetat 10 1 3 59 4,84 739,39 100 2 16 32 33,33 500 1,4 31 15 67,39 1000 3 61 0 100 Fraksi n-heksana 10 1 7 68 9,33 719,434 100 2 12 45 21,05 500 1,4 25 20 55,56 1000 3 52 3 94,55
Aktivitas Antioksidan, Antibakteri, dan Toksisitas Ekstrak Kulit Batang Pohon Kesambi ( Schleichera oleosa ( Lour ) Oken )
kulit  batang  matoa  bersifat  toksis  dengan  pelarut  n- heksana  didapat  LC50  sebesar  33,1  µg/mL  dan mengidentifikasi  hasil  isolasi  senyawa  taraxerone  dari ekstrak n-heksana kulit batang matoa, sedangkan Alfin (2018)  pada  daun  matoa  menghasilkan  LC50  sebesar 183 ppm pada ekstrak etil asetat.

## SIMPULAN
Pada penelitian ini, ekstrak  kasar metanol, fraksi n- heksana,  fraksi  etil  asetat,  dan  fraksi  residu  metanol menunjukkan  aktivitas  antioksidan,  antibakteri  dan toksisitas.  Fraksi  residu  Metanol  memiliki  aktivitas antioksidan  dan  toksistas  lebih  besar  dibandingkan dengan yang lain, untuk uji antibakteri fraksi etil asetat memiliki sifat antibakteri yang lebih besar dibandingkan  dengan  yang  lain  dalam  menghambat pertumbuhan bakteri S. aureus . Untuk fraksi etil asetat diambil  untuk  dilakukan  uji  selanjutnya  yang  sedang berlangsung  yaitu  tahap  pemisahan,  pemurnian  dan elusidasi struktur senyawa.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Penelitian  ini  didukung  dari  pendanaan  penelitian dosen Kampus Sekolah Tinggi Analis Kimia Cilegon.

## DAFTAR PUSTAKA
Ajilye  OO,  Obuotor  EM,  Akinkunmi  EO,  Aderogba  MA. 2015.  Isolation  and  characterization  of  antioxidant and  antimicrobial  compounds  from Anacardium occidentale  L .  (Anacardiaceae)  leaf  extract. King Saud University , 2015, 27: 244 -252.
Alfin  S.  2018.  Toksisitas  ekstrak  daun  Matoa  ( Pometia pinnata )  terhadap  larva  ( Artemia  salina  L )  dengan metode Brine  Shrimp  Lethality  Test.  Jurnal  Analis Kesehatan Klinikal Sains , 6 (1).
Batubara  I,  Mitsunaga  T,  Ohasi  H.  2009.  Screening antiacne  potency  of  Indonesian  Medicinal  Plants, antibacterial,  lipase  inhibition,  and  antioxidant activities. J Wood Sci . 55: 230-235.
Bhatia  H,  Kaur  J,  Nabdi  S,  Gurnani  V,  Chowdhury  A, Reddy  PH,  et  al.  2013.  A  review  on  Schleichera oleosa: pharmacological and environmental aspects. J Pharm Res 2013; 6: 224-9.
Daun H, 1979.  Interaction of Wood Smoke Component and Foods. Food Technology .  33 : 66-71.
Davis  WW,  Stout  TR.  1971.  Disc  plate  methods  of microbiological  antibiotic  assay. Microbiology . 22:659-665.
Deskawati  E.  2015.  Isolasi  Senyawa  Racun  dari  Ikan Buntal. [Tesis]. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Dewi  FK.  2010.  Aktivitas  Antibakteri  Ekstrak  Etanol Buah  Mengkudu  (Morinda  Citrifolia,  Linnaeus) Terhadap  Bakteri  Pembusuk  Daging  Segar  [Skripsi]. Fakultas  Matematika  Dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam. Universitas Sebelas Maret. Surakarta Fernandez  R.  2014.  Uji  Aktivitas  Antibakteri  Fraksi  n- heksana,  Fraksi  Kloroform  Dan  Fraaksi  Air  Dari Ekstrak  Etanolik  Kulit  Batang  Kesambi  ( Schleichera oleosa Merr.)  Terhadap  Bakteri Staphylococcus aureus ATCC  25923  Secara in  vitro [Skripsi]. Surakarta: Fakultas Farmasi, Universitas Setia Budi. Ghosh  P,  Chakraborty  P,  Saha  A.  2011.  Triterpenoids from  Schleichera  oleosa  of  Darjeeling  Foothills  and Their  Antimicrobial  Activity. Indian  Journal  of Pharmaceutical Sciences . 73(2): 231-233.
Mallik  BK,  Panda  T,  Padhy  RN.  Traditional  herbal practices  by  the  ethnic  people  of  Kalahandi  district of  Odisha,  India.  Asian  Pac  J  Trop  Biomed  2012;  2: S988-94.
Molyneux  P.  2014.  The  use  of  the  stable  free  radical (DPPH)  antioxidant  activity. J  Sci  and  Tech .  26:211- 219.
Patra  GC,  Sahu  PS,  Panda  P,  Sahoo  S,  Mohapatra  S, Bindhani  BK.  Anti-mycotic  effect  of  ‘kusum  oil’ extract  on  candida  albicans  clinical  isolates  from endophthalmitis  cases. Int  J  Pharm  Bio Sci 2012; 3: B475-84.
Pelczar,  M.  J.  dan  Chan,  E.  C.  S.  1988.  Dasar-Dasar Mikrobiologi, diterjemahkan oleh Hadioetomo, R. S. Jakarta (ID) : Penerbit Universitas Indonesia, Jakarta. Prasetya,  Shantina  O,  Soegianto  L,  Wijaya  S.  2017.  Uji Aktivitas  antibakteri  dan  Antibiofilm  Fraksi  Biji Kelengkeng  ( Euphoria  longan  lour Steud )  Terhadap Staphylococcus  aureus ATCC  6538.  [Thesis].  Widya Mandala Catholic University Surabaya. Surabaya. Santoso  HB.  2008.  Ragam  dan  Khasiat  Tanaman  Obat.
Jakarta Selatan. Agromedia Pustaka. Hal.50 Suita  E.  2012. Seri  Teknologi  Pembenihan  Tanaman Hutan  Kesambi ( Schleicera  oleosa MERR.).  Bogor: Balai  Penelitian  Teknologi  Perbenihan  Tanaman Hutan.
Susilawati  NM,  Ramona  Y,  Parwata  IOA.  2016. Pengaruh  Konsentrasi  Ekstrak  Kasar  Kulit  Batang Kusambi ( Schleichera oleosa (Lour) Oken)  Terhadap Pertumbuhan In  Vitro Bakteri  E. coli . Jurnal Metamorfosis III (2):96-102
Thatavong  X.  2015.  Chemical  Constituents  and Biological  Activities  From  Crude  Hexane  Extract  of Schleichera  Oleosa Fruits.  Chonburi:  Burapha University.
Sari et al .
Thind  S  Tarunpreet,  Rampal  G,  Agrawal  K  Satyam, Saxena K Ajit, Arora Saroj. 2009. Diminution of free radical  induced  DNA  damage  by  extracts/fractions from  bark  of  Schleichera  oleosa  (Lour)  Oken . Formerly Natural Product Letters.
Tillah  M,  Batubara  I,  Sari  RK.  2017.  Antimicrobial  and antioxidant activities of resins and essential oil from pine ( Pinus merkusii, Pinuso ocarpa, Pinus insularis ) and  agathis  ( Agathis  loranthifolia ). Biosaintifika. 9(1): 134-139.
Tristantini  D,  Ismawati  A,  Pradana  T  B,  Jonathan  G  B.
2016. Pengujian Aktivitas Antioksidan Menggunakan
DPPH  pada  Daun  Tanjung  ( Mimusops  elengi L).  FTI UPN. Yogyakarta.
Uyun  J.  2016. Analisis  Kandungan  Senyawa  Metabolit Sekunder  Dari  Kulit  Batang  Kesambi  (Schleichera oleosa)  Dan  Uji  Aktivitas  Fraksi  Terhadap  Bakteri Patogen. [Skripsi]. Sekolah Tinggi Analis Kimia (STAK) Cilegon. Cilegon.
Yuhernita,  Juniarti.  2011. Analisis  senyawa  metabolit sekunder  dari  ekstrak  methanol  daun  Surian  yang berpotensi sebagai antioksidan . Jakarta 10510.