## POTENSI BAKTERI PADA LUMPUR MANGROVE KOTA TARAKAN SEBAGAI PENGHASIL ENERGI LISTRIK BERKELANJUTAN

## POTENTIAL OF BACTERIA IN THE MANGROVE SLUDGE OF TARAKAN CITY AS A PRODUCER OF SUSTAINABLE ELECTRIC ENERGY

## Tri Paus Hasiholan Hutapea1)*, Siska Nofrida Marbun2), Encik Weliyadi2)
1)Jurusan Teknologi Hasil Perikanan FPIK Universitas Borneo Tarakan
2)Jurusan Manajemen Sumberdaya Perairan FPIK Universitas Borneo Tarakan
Jl. Amal Lama No.1,Po. Box. 170 Tarakan KAL-TARA.
*Email : hutapea2606@gmail.com

## ABSTRAK
Energi  listrik  merupakan  energi  utama  yang  dibutuhkan  manusia.  Hampir  dapat dipastikan,  semua  teknologi  yang  ditemukan  membutuhkan  energi.  MFCs  ialah  teknologi yang  memanfaatkan  mikrobial  dalam  medium  organik  untuk  mengubah  bahan  organik menjadi  energi  listrik.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  jenis  bakteri  pada  lumpur mangrove  yang  berpotensi  menghasilkan  energi  listrik  dan  mengukur  tegangan  yang dihasilkan  dari  aktivitas  bakteri.  Penelitian  ini  dilakukan  dengan  cara  mengisolasi  dan mengidentifikasi bakteri dan pengukuran tegangan yang dihasilkan dari aktivitas bakteri yang terdapat  pada  lumpur  mangrove.  Hasil  identifikasi    bakteri  diperoleh  3  (tiga)  jenis  isolat bakteri  yang  dapat  hidup  selama  proses  isolasi  yaitu Aeromonas sp ,  Actinobacilus sp dan Enterobacteria sp.  Hasil  penelitian  selama  28  hari  dilakukan  pengukuran  tegangan  listrik pada  MFCs.  Tegangan    listrik  yang  dihasilkan  mencapai  puncak  produksi  tegangan  listrik pada hari ke-3 yaitu 243 µV pada lumpur mangrove.
Kata kunci : Microbial Fuel cells (MFCs), Bakteri, Energi terbarukan

## ABSTRACT
Electrical energy is the main energy needed by humans. Almost certainly, all the technologies found require this energy. MFCs are technologies that utilize microbials in organic mediums to convert organic materials into electrical energy. This study aims to determine the type of bacteria in mangrove mud that potentially generate electrical energy and measure the voltage generated  from  bacterial  activity.  This  research  was  conducted  by  isolating  and  identifying bacteria and stress measurement resulting from bacterial activity found in mangrove sludge. The  results  of  the  research  During  28  days  of  measurement  of  electrical  voltage  on  MFCs. The result of bacteria identification obtained 3 (three) types of bacterial isolates that can live during  the  isolation  process  of  Aeromonas  sp,  Actinobacilus  sp  and  Enterobacteria  sp.  The resulting electric voltage reached the peak of electricity voltage production on the 3rd day of 243 µV in mangrove sludge.
Keywords: Microbial Fuel cells (MFCs), Bacteria, Electrical energy

## PENDAHULUAN
Energi  listrik  merupakan  energi  utama yang  dibutuhkan  manusia.  Hampir  dapat dipastikan, semua teknologi yang ditemukan membutuhkan energi ini. Seakan  tidak  dapat  dipisahkan  dari kehidupan  manusia,  energi  listrik  secara tidak  sadar  sudah  menjadi  kebutuhan primer  yang  harus  dipenuhi  setiap  saat. Pengembangan untuk mendapatkan sumber energi  listrik  terus  dilanjutkan  agar ketersediaan  listrik  dapat  terjaga.  Salah satu  cara  pembangkit  energi  listrik alternatif  yang  belakangan  ini  marak dikembangkan  oleh  para  ahli  ialah  untuk menghasilkan energi listrik yaitu Microbial Fuel Cells (MFCs) dan diharapkan menjadi teknologi yang menjanjikan untuk memenuhi kebutuhan listrik.
MFCs  ialah teknologi  yang  memanfaatkan mikrobial  dalam  medium  organik  untuk mengubah  bahan  organik  menjadi  energi listrik. Sifat mikroba yang dapat mendegradasi medium organik ( enrichment media) pada MFCs menghasilkan  ion  elektron  dan  proton sehingga ion-ion inilah yang menghasilkan perbedaan  potensial  listrik.  Bakteri  yang dimanfaatkan untuk membangkitkan energi adalah  dari  jenis  bakteri  yang  melakukan aktivitas  reaksi  oksidasi  reduksi.  Bakteri ini  biasanya  hidup  didalam  tanah  atau lumpur  (Strik  et  al.,  2008).  Potensi keberadaan  bakteri  ini  pun  sangat  besar pada lumpur hutan mangrove.
Lumpur hutan mangrove merupakan substrat untuk beraktivitasnya jutaan bakteri. Hal ini didukung dengan kelimpahan  bahan  organik  dilumpur  hutan mangrove  yang  salah  satunya  berasal  dari serasah  tumbuhan  mangrove  (Yulma, 2015). Aktivitas bakteri biasanya mengalami  reaksi  oksidasi  dan  reduksi yang  akan  menghasilkan  nutrient  (Dwi, 2004)  yang  terdapat  pada  lumpur  hutan mangrove.  Kecepatan  oksidasi  sangat ditentukan oleh peran dari bakteri
pengoksidasi  dan  dalam  kondisi  reduksi, sangat  ditentukan  oleh  aktivitas  bakteri pereduksi.  Dengan  adanya  reaksi  oksidasi reduksi,  maka  akan  adanya  lompatan elektron.  Elektron  yang  bergerak  dapat diukur  dalam  bentuk  tegangan.  Sehingga dalam  penelitian  ini  akan  diukur  tegangan yang  terjadi  dari  aktivitas  bakteri  dalam lumpur hutan mangrove.
Hutan  mangrove  yang  digunakan  sebagai tempat  penelitian  adalah  hutan  mangrove yang  berada  di  Kota  Tarakan,  Kalimantan Utara. Hal ini akan menjadi sangat penting karena  ketersediaan  sumber  energi  listrik yang ada di kota Tarakan semakin terbatas. Seringnya pemadaman listrik yang dilakukan  oleh  PT  PLN  kota  Tarakan menyebabkan  keresahan  masyarakat  Kota Tarakan. Diharapkan melalui penelitian ini akan  menjadi  solusi  dari  permasalahan ketersedian  energi  listrik  di  Kota  Tarakan Kalimantan Utara

## METODE PENELITIAN

## Peralatan
Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini yaitu  botol  uc  140  ml,  inkubator,  gelas objek,  jarum  ose,  mikropipet,  tabung reaksi,  aluminium  foil,  autoklaf, laminary air flow (aliran udara), timbangan analitik, lampu  bunsen,  cawan  petri,  speader, timbangan  analitik,  multimeter,    dan solder.

## Bahan
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini yaitu  lumpur  mangrove,  motility  indol ornithin  (MIO),  larutan  katalase  (H 2 O 2 3%), trypticase  soy  agar (TSA),  larutan kalium  hidroksida  (KOH  3%),  paraffin, stripe  oksidase  (kertas  oksidasi),    larutan respirasi  dan  karbohidrat  (O/F),  larytan glukosa, alkohol 70%, aquades, pewarnaan gram, lilin, kabel listrik, logam timah, dan plat besi.

## Prosedur Penelitian Isolasi Bakteri
Isolasi  bakteri  dilakukan  dengan  cara menimbang  lumpur  mangrove  sebanyak  5 gram. Selanjutnya dilakukan tahap pengenceran. Pengenceran lumpur mangrove mencapai tingkat 10-7
menggunakan botol uc yang berukuran 140 ml sebanyak 7 botol yang telah disterilkan dan diberi label 10-1 – 10-7. (Hadioetomo, 1993; Cappuccino dan Sherman, 1996).

## Identifikasi Bakteri Lumpur Mangrove
1. Uji Pewarnaan Gram
Objek  gelas  dibersihkan  dengan  alkohol 70% dan diberi aquades, kemudian diambil sedikit  biakan  bakteri  menggunakan  jarum ose,  diratakan  pada  kaca  objek  dan diletakan  pada  laminari  sampai  kering, setelah  kering  ditetesi  dengan  larutan Kristal  Violet  (Gram  A),  dan  didiamkan selama  1  menit,  lalu  dicuci  dengan  air mengalir  dan  dikeringkan.  Selanjutnya ditetesi  dengan  larutan  Yodium  (Gram  B) dan  dibiarkan  selama  1  menit,  lalu  dicuci dengan  air  mengalir  dan  dikeringkan. Kemudian  ditetesi  Acetone  Iodine  (Gram C)  dan  dibiarkan  selama  1  menit,  lalu dicuci dengan air mengalir dan dikeringkan.  Setelah  itu  ditetesi  dengan larutan sarafin (Gram D), kemudian dicuci dengan air mengalir dan dikeringkan.
2.  Uji  Utama  (KOH  3%,  Katalase  (H2O2)
3% dan Oxidase)

## a. Uji  KOH 3% (Kalium Hidroksida)
Objek  gelas  dibersihkan  dengan  alkohol 70%  dan  ditetesi  KOH  3%  pada  objek gelas,  kemudian  diambil  sedikit  biakan bakteri  menggunakan  jarum  ose  dan dicampurkan dengan KOH 3%.
b. Uji H 2 O 2 (Katalase)
Objek  gelas  dibersihkan  dengan  alkohol 70% dan ditetesi katalase (H 2 O 2 ) kemudian diambil sedikit biakan bakteri menggunakan  jarum  ose  dan  dicampurkan dengan katalase (H 2 O 2 ).

## c. Uji Oksidase
Biakan  atau  isolat  bakteri  yang  murni diambil  dengan  menggunakan  jarum  ose steril,  Isolat  bakteri  tersebut  kemudian diletakkan  pada  kertas  baktiden  oksidase. Setelah  itu  didiamkan  selama  20-60  menit dan diamati perubahannya
3. Uji Lanjut (O/F , Glukosa dan Mio) a. Uji O/F Inokulasi bakteri pada media O/F dilakukan secara aseptis dengan
menusukan jarum ose steril yang mengandung  isolat  bakteri    lurus  kedalam 2  tabung  /  media  O/F.  Yang  satu  ditutup dengan  parafin  oil  dan  yang  satunya  lagi dibiarkan  tanpa  parafin  oil.  Kemudian media  O/F  yang  telah  diinokulasi  bakteri selanjutnya  diinkubasi  dengan  temperature 30 o C.

## b. Uji Glukosa
Pengujian  gula-gula  (Glukosa)  dilakukan dengan  cara  menginokulasikan  bakteri secara  aseptis  kedalam  media  gula-gula. Inokulasi  dilakukan  dengan  menggunakan ose  steril  kemudian  dicampurkan    pada media gula-gula (Glukosa). Media glukosa yang telah diinokulasi selanjutnya diinkubasi dengan temperature 30 o C.

## c. Uji Motility Indole ornithine (MIO)
Untuk  menguji  Motility  biakan  atau  isolat bakteri yang murni diambil sedikit dengan menggunakan  jarum  ose  steril,  kemudian menusuk  lurus  sampai  bawah  kemedia MIO.  Selanjutnya  diinkubasi  media  MIO dengan temperatur 30 o C.
Pengukuran  tegangan  yang  dihasilkan oleh aktivitas bakteri 1.  Pembuatan  media  aktivitas  bakteri (Elektroda)
Plat  besi  yang  digunakan  sebagai  media ada 2 yaitu sebagai anoda (+) dan katoda (- ). Pembuatan media untuk bakteri beraktivitas dilakukan dengan cara membakar  parafin.  Pembakaran  dilakukan secara  perlahan  sampai  menghasilkan
karbon  kemudian  plat  besi  diletakkan diatas  pembakaran  parafin  agar  karbon yang dihasilkan dapat menyelimuti permukaan  plat  besi.  Pada  tahap awal  plat besi  yang  digunakan  berukuran  8  cm  x  6 cm  dengan  ketebalan  0,5  mm.  Plat  besi yang  telah  terlapis  karbon  kemudian disambung  dengan  2  buah  kabel  listrik. Pembuatan media tumbuh bakteri sebanyak 10 plat besi.

## 2. Pengukuran tegangan
Pengukuran  tegangan  dilakukan  secara langsung  di  lumpur  Mangrove.  Media tumbuh  bakteri  yang  telah  dibuat,  ditanam didalam  lumpur  hutan  Mangrove  sedalam 30  cm.  Setelah  ditanam,  media  tumbuh bakteri dibiarkan selama 28 hari. Dilakukan  pengukuran  tegangan  yang dihasilkan secara berkala pada hari ke 3, 5, 7, 14, 21, 28 menggunakan alat multimeter pada sepuluh media tumbuh bakteri.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil identifikasi  bakteri diperoleh 3 (tiga) jenis  isolat  bakteri  yang  dapat  hidup selama  proses  isolasi  yaitu Aeromonas sp, Actinobacilus sp  dan Enterobacteria sp.
Hasil  karakterisasi  ketiga  bakteri  tersebut ditelaah  menggunakan  pencocokan  uji dengan panduan identifikasi bakteri berdasarkan
Bergey’s Manual of Determinative  Bacteriology ,  9th  Ed  (Holt et al.. 1994).
Bakteri Aeromonas sp.  bersifat  Gram negatif dari adanya reaksi oksidase positif, karakteristik  berbentuk  batang  pendek, bersifat aerob dan fakultatif  anaerob, tidak berspora,  motil,  mempunyai  satu  flagel, hidup  pada  kisaran  suhu  20-30 0 C,  pH  4.7- 11.  Bakteri  ini  mampu  memfermentasikan beberapa  gula  seperti  glukosa,  fruktosa, maltose,  dan  trehalosa.  Aeromonas  sp termasuk bakteri gram negatif dan berbentuk  bulat  bersifat  motil  dan  dapat hidup  pada  kondisi  aerob.  Suhu  optimum untuk  pertumbuhannya  yaitu  22 0 C,  tetapi
sebagian  besar  bakteri  ini  tumbuh  baik pada suhu 37 0 C (Holt, et al., 1994). Bakteri ini  mampu  memanfaatkan  senyawa  gula seperti  glukosa,  maltosa,  dan  sakarosa yang  dikatabolisme  dengan  memproduksi asam dan menghasilkan gas.
Bakteri Actinobacillus sp. merupakan gram negatif  yang  memiliki  kemampuan  dalam mendegradasi  fruktosa,  laktosa,  selulosa, kitin,  maltose  dan  glukosa  (Lamid  et  al., 2006).  Bakteri  bersifat  anaerob  dan  aerob yang mampu mempermentasikan karbohidrat  dan  menghasilkan  enzim  yang mencerna substrat eksternal dan memanfaatkan  bahan  organik  sebagai sumber  karbon  dan  energi.  Bakteri Actinobacillus sp.  mampu  hidup  pada  pH di atas 6 (Lally et al., 1989). Actinobacillus sp. termasuk dalam kelompok bakteri gram negatif,  sel  berbentuk  bulat  dan  bersifat non  motil  (Holt,  et  al.,  1994).  Bakteri  ini umumnya  hidup  pada  kondisi  anaerob fakultatif  dan  mampu  memfermentasi karbohidrat. Actinobacillus sp.  memiliki kemampuan  dalam  membentuk  spora sehingga  sangat  menguntungkan  bagi bakteri  tanah  terkait  dengan  kondisi lingkungannya  yang  selalu  berubah  dan tidak menguntungkan (Waluyo, 2007).
Bakteri Enterobacteria sp.  merupakan bakteri  gram  negatif  berbentuk  batang. Enterobacteria sp. merupakan bakteri yang tersebar  secara  luas  di  alam.  Bakteri  ini terdapat pada air, tanah, tumbuh- tumbuhan. Bakteri ini tidak dapat membentuk  spora  bakteri  dari  keluarga Enterobacteriaceae .  Bakteri  ini  mampu memfermentasikan  glukosa,  nitrat  berubah menjadi nitrit, tumbuh pada suhu 25-45 o C dan  suhu  optimum  hidupnya  yaitu  37  oC dan  pH  6,8  (Farmer  et  al.,  1980). Enterobactriaceae merupakan  kelompok gram negatif, berbentuk batang, memfermentasi glukosa menjadi asam atau asam  dan  gas,  katalase  (+),  Motil  dan  ada yang  non  motil,  oksidase  (+),  sering  di jumpai  pada  permukaan  eksternal  atau internal  dari  tubuh  sebagai  infeksi  yang
dapat  menyerang  system  kekebalan  tubuh manusia (Jawetz, 2013). Anggota
Enterobacteriaceae kebanyakan juga dapat mengubah  nitrat  menjadi  nitrit,  walaupun ada
penegecualian
(misalnya photorhadus ). Enterobacteriaceae
kebanyakan  memiliki  flagel  digunakan untuk  bergerak,  tetapi  ada  juga  kelompok yang non-motil.
Enterobacteriaceae merupakan  nonspora  dan  membentuk reaksi katalase bervariasi, dalam pertumbuhannya Enterobacteriaceae kurang atau sedikit memerlukan NaCI.

## Produksi  tegangan  listrik  Microbial
Fual Cell (MFCs) Produksi  tegangan  listrik  yang  dihasilkan merupakan hasil kegiatan dari mikroorganisme pada sedimen yang mengkonversi  bahan  organik    menjadi energi  listrik.  Pengukuran  tegangan  listrik pada  MFCs  dilakukan  selama  28  hari. Pengukuran tegangan listrik yang dihasilkan    selama  penelitian  dapat  dilihat pada Tabel 1 dan Gambar 2.
Table 1. Hasil Pengukuran tegangan listrik
Hasil  pengukuran  tegangan  listrik  dihari pertama  yaitu  sebesar  0  µV,  hal  ini disebabkan karena belum terjadinya oksidasi  reduksi  pada  plat  besi  yang dilakukan oleh bakteri.
Produksi tegangan listrik mencapai puncak pada  hari  ketiga  dan  menjadi  tegangan
maksimal  MFCs  yaitu  sebesar  243  µV. Awal  pengukuran,  tegangan  listrik  yang dihasilkan meningkat drastis hingga mencapai  puncak  produksi  kemudian tegangan  listrik  secara  bertahap  menurun. Tegangan listrik yang dihasilkan meningkat sebanding dengan jumlah
Plat besi Hari ke-1 Hari ke-3 Hari ke-5 Hari ke-7 Hari  ke- 14 Hari  ke- 21 Hari  ke- 28 A 0 243 192 57 39 14 0 B 0 138 76 63 47 20 0 C 0 175 120 95 56 0 0 D 0 87 47 24 27 0 0 E 0 142 90 18 21 0 0 F 0 196 164 92 53 8 0 G 0 183 152 74 42 3 0 H 0 66 27 33 16 0 0 I 0 210 187 76 43 0 0 J 0 84 32 38 24 7 0 RATA-RATA 0 152.4 108.7 57 36.8 1.6 0
Gambar 1. Rata-rata produksi tegangan listrik MFCs
bakteri  yang  hidup  pada  elektroda.  Hasil pengukuran tegangan listrik dihari terakhir yaitu  sebesar  0  µV,  hal  ini  disebabkan karena  karbon  pada  plat  besi  (elektroda) telah  habis.  Penurunan  tegangan  listrik menjelang  akhir  pengukuran  disebabkan bakteri  yang  terdapat  di  sekitar  elektroda berkurang.
Mikroorganisme  adalah  organisme  yang berukuran  sangat  kecil  (mikroskopis), termasuk  bakteri,  yeasts,  jamur  benang (mold) dan bakteria, yang mampu berperan di berbagai proses alami dan bioteknologi, termasuk  MFCs  ( Microbial  Fuel  Cells ). Pertumbuhannya  pada  umumnya  sangat cepat sehingga dapat menghasilkan komunitas  mikroorganisme  dalam  jumlah yang besar.
Sejumlah
bakteri exoelectrogen dilaporkan membentuk struktur khusus yang dinamakan nanowire. Nanowire  tersebut  diperkirakan  berfungsi sebagai  penghantar  elektron.  Sejumlah mikroorganisme  dapat  digunakan  untuk menghasilkan  aliran  listrik  melalui  MFCs. MFCs  digunakan  dan  didesain  untuk menghasilkan energi listrik secara elektrokimia.  Proses  oksidasi  pada  anoda dan  proses  reduksi  pada  katoda  mampu menghasilkan  energi  listrik.  MFCs  tidak memerlukan  katalis  metal  pada  anoda, melainkan  mikroorganisme  yang  secara biologis  mampu  mengoksidasi  materi organik dan mentransfer elektron ke anoda. Sementara  itu,  proton  dipisahkan  dan ditransfer ke katoda. Oleh karena itu, dapat dikatakan bahwa semua materi yang dapat dibiodegradasi  dapat  digunakan  sebagai MFCs.  Bakteri  pada  MFCs  tidak  secara langsung mentransfer elektron yang dihasilkan ke aseptor elektron terminalnya, melainkan  menyalurkan  ke  elektroda (anoda). Elektron-elektron kemudian dikonduksikan  mendekati  katoda  sehingga menghasilkan  energi  listrik.  Elektron dihasilkan  oleh  bakteri  dari  senyawa tersebut  dan  ditransfer  ke  anoda  (terminal negatif),  kemudian  mengalirkannya  ke katoda  (terminal  positif).  Elektron  yang
dihasilkan  oleh  bakteri  dapat  ditransfer  ke anoda  melalui  mediator  elektron,  dan dengan  bantuan  membran  tertentu  atau nanowire.  Pada  katoda  terjadi  proses reduksi,  senyawa  yang  mengalami  reduksi adalah  air.  Air  adalah  substansi  kimia dengan rumus kimia H 2 O. Satu molekul air tersusun  atas  dua  atom  hidrogen  yang terikat  secara  kovalen  pada  satu  atom oksigen.  Air  bersifat  tidak  berwarna,  tidak berasa  dan  tidak  berbau  pada  kondisi standar, yaitu pada tekanan 100 kPa (1 bar) and  temperatur  273,15  K  (0°C).  Zat  kimia ini  merupakan  suatu  pelarut  yang  penting, yang memiliki kemampuan untuk melarutkan  banyak  zat  kimia  lainnya, seperti garam-garam, gula, asam, beberapa jenis  gas  dan  banyak  macam  molekul organik.  Air sering disebut sebagai pelarut universal karena air melarutkan banyak zat kimia.  Dalam  bentuk  ion,  air  dapat dideskripsikan sebagai sebuah ion hidrogen (H+) yang berasosiasi (berikatan) dengan  sebuah  ion  hidroksida  (OH-). Reaksi  reduksi  air  dapat  dilihat  melalui persamaan :
2 H 2 O (g) + 2e      ―›       H 2(g) + 2 OH - (aq)
Reaksi  oksidasi  reduksi  (Redoks)  adalah reaksi yang didalamnya terjadi perpindahan elektron secara berurutan dari satu  spesies  kimia  ke  spesies  kimia lainnya,  yang  sesungguhnya  terdiri  atas dua  reaksi  yang  berbeda,  yaitu  oksidasi (kehilangan elektron) dan reduksi (memperoleh elektron). Reaksi ini merupakan  pasangan,  sebab  elektron  yang hilang  pada  reaksi  oksidasi  sama  dengan elektron  yang  diperoleh  pada  reaksi reduksi.  Masing-masing  reaksi  (oksidasi dan reduksi) disebut reaksi paruh (setengah reaksi),  sebab  diperlukan  dua  setengah reaksi  ini  untuk  membentuk  sebuah  reaksi dan  reaksi  keseluruhannya  disebut  reaksi redoks.
Pola  produksi  tegangan  listrik  pada  MFCs menunjukkan  kesamaan  dengan  beberapa penelitian  serupa  seperti,  penelitian  yang
menggunakan  sedimen  sungai  sebagai substrat  dalam  MFCs.  Hasil  penelitian menghasilkan  tegangan  maksimal  sebesar 29,3 mA/m2, kemudian mengalami penurunan  secara  bertahap  seiring  waktu menurut  (Hong  et  al.,  2010).  Perbedaan tegangan listrik yang dihasilkan disebabkan  oleh  jenis  air,  jumlah  bahan organik  yang  terkandung  dalam  sedimen dan  berbagai  kondisi  operasi  lainnya. Kinerja  MFCs  dipengaruhi  oleh  kecepatan degradasi  substrat,  kecepatan  transfer elektron  dari  bakteri  ke  anoda,  transfer proton  dalam  larutan,  aktivitas  mikroba, dan substrat yang digunakan. Analisis data menggunakan  uji  statistik One sample  T- test  untuk  mengetahui  perbedaan  hasil pengujian  tegangan  listrik  yang  diukur sebanyak  7  kali.  Setiap  pengukuran dilakukan  10  kali  karena  terdapat  10  plat besi. Berdasarkan uji statistik menggunakan One sample T-test, diperoleh  nilai  probabilitas  sebesar  0.724 atau  P  >  0,05.  Hal  ini  menggambarkan bahwa  tidak  terdapat  perbedaan  yang signifikan terhadap hasil pengujian tegangan  listrik  yang  diukur  sebanyak  7 kali pengukuran selama 28 hari.

## KESIMPULAN
Hasil identifikasi  bakteri diperoleh 3 (tiga) jenis  bakteri  yang  dapat  hidup  selama proses  isolasi  yaitu  Aeromonas  sp, Actinobacilus  sp  dan  Enterobacteria  sp. Selama  28  hari  dilakukan  pengukuran tegangan  listrik  pada  MFCs.  Tegangan listrik  yang  dihasilkan  mencapai  puncak produksi  tegangan  listrik  pada  hari  ke-3 yaitu  243  µV  pada  lumpur  mangrove  dan secara bertahap mengalami penurunan.

## DAFTAR PUSTAKA
Bernhard, A. (2010). Nitrogen is one of the primary  nutrients  critical  for  the survival  of  all  living  organisms.
Although nitrogen is very abundant in the  atmosphere  ,  it  is  largely inaccessible  in  this  form  to  most
organisms.  This  article  explores  how nitrogen becomes avai. Nature Education Knowledge , 2 (2), 1–8.
Cappuccino,  J.  G  dan  N.  Sherman.1996.
Microbiology  A  Laboratory  Manual . Rockland Community College Suffern. New York.
Cowan  and  Steel’s.  1993.  Manual  for  the identification  of  medical  bacteria.  3rd Edition.  Cambridge  University  Press. New York. pp. 21-25.
Dwi, A.  (2004). Effect of pH and organic substrate  on  growth  and  activities  of ammonia-oxidizing
bacteria. Biodiversitas,  Journal  of  Biological Diversity , 5 (2), 43–47. https://doi.org/10.13057/biodiv/d0502 01 Farmer  JJ  III,  Abury  MA,  Hickman  FW,
Brenner  DJ,  the  Enterobacteriaceae Study Group (USA)(1980). “Enterobacter  sakazakii:  a  new species of
“Enterobacteriaceae”isolated from clinical  specimens”.  Int  J  Syst Bacteriol 30:569-84.
Hadioetomo,  R.,  S.  1993.  Mikrobiologi Dasar  Dalam  Praktek  :  Teknik  dan Prosedur  Dasar  Laboratorium.  PT Gramedia Pustaka Utama. Jakarta.
Holt,  J.  H.,  Krieg,  N.  R.,  Sneath,  P.  H.  a., Staley, J. T., & Williams, S. T. (1994). Bergey’s  manual  of  determinative bacteriology  ninth  edition. European Journal  of  Paediatric  Neurology : EJPN :  Official  Journal  of  the European Paediatric Neurology
Society ,
13 (6),560.https://doi.org/10.1016/j.ejp n.2008.10.006
Hong,  S.W.,  Hyung  J.K.,Yong  S.C.  &  Tai H.C.  (2010).  Alteration  of  sediment organic  matter  in  sediment  microbial fuel cell technology.EnvirontmentalPolution.T ersediapada:http://ocean.kisti.re.kr/do wnfile/volume/chemical/JCGMCS/20 10/v31n7/JCGMCS_2010_v31
n7_2025.pdf(diakses  pada  8  Maret 2014)
Jawet,  G.  F.,  Carroll,  K.  C.,  Butel,  B., Morse,  S.  A.,  &  Mietzner,  T.  (2013).
Medical Microbiology . Jawetz, Melnick,  &  Adelberg’s  Medical Microbiology .
https://doi.org/10.1017/CBO97811074
15324.004
Lally,  E.  T.,  Golub,E.  E.,  Kieba,  I.  R.,
Taichman,  N.  S.,  Rosenbloom,  J.  C., Gibson,  C.W.  &  Demuth,  D.R. (1989). Analysis  of  the  Actinobacillus actinomycetemcomitans leuko-toxin gene. J Biol Chem
Lamid, M., S. Chuzaemi, N. T. Puspaningsih  dan  Kumartono.  2006. Inokulasi  Bakteri  Xilanolitik  Asal Rumen  Sebagai  Upaya  Peningkatan
Nilai  Nutrisi  Jerami  Padi.  Universitas Airlangga. Surabaya.
Strik,  B.,  D.  P.  B.  T.,  M.,  H.  (Bert)  H.  V, H.,  S.  J.  F.,  &  N.,  B.  C.  J.  (2008). Green  electricity  production  with living  plants  and  bacteria  in  a  fuel cell. International  Journal  of  Energy
Research , 32 (9), 870–876. https://doi.org/10.1002/er.1397 Waluyo L.2007.Mikrobiologi Umum.
UMM Press. Malang
Yulma, Ihsan, B., Sunarti, S., Malasari, E., Wahyuni, N., & Mursyban, M. (2017). Identifikasi  Bakteri  Pada  Serasah Daun Mangrove yang Terdekomposisi di Kawasan Konservasi Mangrove dan Bekantan  (KKMB)  Kota  Tarakan. Journal  of  Tropical  Biodiversity Biotechnology , 2 (1),28.https://doi.org/
10.22146/jtbb.27173