## STUDI  KOMUNITAS  BAKTERI  PADA  SISTEM  RESIRKULASI  PADA BUDIDAYA LELE DUMBO ( Clarias gariepinus )
Study of Bacteria Community in the Recirculation System of Catfish ( Clarias gariepinus ) Cultivation
Wahyu Isroni 1* , Dyah Setyawati 2 dan Nurul Maulida 3 1 Fakultas Perikanan dan Kelautan, Universitas Airlangga, Surabaya
2 Badan Karantina Ikan, Pengendalian Mutu dan Keamanan Hasil Perikanan Surabaya, Surabaya
1 Fakultas Teknologi Pertanian, Universitas Brawijaya, Malang
* wahyu.isroni@fpk.unair.ac.id

## Abstrak
Ikan lele ( C. gariepinus ) merupakan jenis ikan konsumsi budidaya yang dapat dilakukan pada lahan sempit dan air terbatas pada padat tebar tinggi. Perlakuan yang digunakan adalah padat penebaran berbeda (100 ekor/m 3 , 300 ekor/m 3 , dan 500 ekor/m 3 ) untuk mengetahui komunitas bakteri pada kepadatan berbeda. Pada kolam 1 hari pertama menunjukkan kepadatan 5.7x10 4 CFU/ml, spesies yang ditemukan yaitu Bacillus subtilis dan Bacillus megaterium . Pada kolam 1 hari ke-30 menunjukkan kepadatan 8.3x10 4 CFU/ml,  spesies yang ditemukan yaitu Bacillus subtilis. Pada kolam 1 hari ke-60 menunjukkan kepadatan 3.1x10 4 CFU/ml, spesies yang ditemukan yaitu Empedobacter  brevis. Pada  kolam  2  hari  pertama  menunjukkan  kepadatan  3.2x10 3 CFU/ml,    spesies  yang ditemukan yaitu Bacillus subtilis . Pada kolam 2 hari ke-30 menunjukkan kepadatan 3.5x10 3 CFU/ml,  spesies yang ditemukan yaitu Spingomonas paucimobilis. Pada kolam 2 hari ke-60 menunjukkan kepadatan 3.7x10 5 CFU/ml, spesies yang ditemukan yaitu Empedobacter brevis. Pada kolam 3 hari pertama menunjukkan kepadatan 1.4x10 3 CFU/ml,  spesies yang ditemukan yaitu Staphilococus vitulus dan Bacillus megaterium . Pada kolam 3 hari ke-30 menunjukkan kepadatan 1.7x10 3 CFU/ml, spesies yang ditemukan yaitu Stapilococus xylosus dan Bacillus cereus. Pada kolam 3 hari ke-60 menunjukkan kepadatan 3.6x10 5 CFU/ml, spesies yang ditemukan yaitu Bacillus subtilis dan Bacillus lincheniformis.
Kata kunci: C. Gariepinus, Bacillus subtili, Bacillus megaterium, Bacillus lincheniformis

## Abstract
Catfish ( C. gariepinus ) is a type of consumption fish that is starting to grab the attention of aquaculture entrepreneurs because it can be done on a narrow land and limited amount of water with high stocking densities. The method used in this research is a descriptive method which is a research conducted to provide an objective picture.  The  treatments  used  are  different  stocking  densities  (100  fish/m 3 ,  300  fish/m3,  and  500  fish/m 3 )  to determine  the  bacterial community  at  different  frequencies.  Water  samples  were  taken three times  during the maintenance period, namely the 1 st day, 30 th day, and 60 th day. Water quality parameter is measured every morning and evening for 60 days. There are three components in the recirculation system used, namely, fish rearing ponds, swirl-filter tanks, and biofilter tanks. The first pond showed an initial density of 5.7x10 4 CFU/ml, with Bacillus subtilis and Bacillus megaterium . After 30 days, there are Bacillus subtilis with 8.3x10 4 CFU/ml density. In day 60, there are Empedobacter brevis (3.1x10 4 CFU/ml). For the second pond, the initial Bacillus subtilis density is 3.2x10 3 CFU/ml. On day 30, the density is 3.5x10 3 CFU/ml, the species found was Spingomonas paucimobilis . On day 60, the Empedobacter brevis density is 3.7x10 5 CFU/ml. In the third pond, the initial mass is 1.4x10 3 CFU/ml  of Staphilococus  vitulus and Bacillus  megaterium .  After  30  days  the  density  is  1.7x10 3 CFU/ml ( Stapilococus xylosus and Bacillus cereus ). The 60 th day showed a density of 3.6x10 5 CFU/ml of Bacillus subtilis and Bacillus lincheniformis .
Keywords : C. Gariepinus, Bacillus subtili, Bacillus megaterium, Bacillus lincheniformis

## PENDAHULUAN
Sumber  daya  alam  seperti  air  dan lahan,  menjadikan  intensifikasi  sebagai pilihan  yang  paling  memungkinkan  dalam meningkatkan  produksi  budidaya.  Upaya untuk mengembangkan perikanan budidaya terutama  pada  sistem  intensif  hingga  kini
masih  terus  dilakukan  mengingat  sistem tersebut  masih  terkendala  oleh  berbagai masalah  di  antara  buangan  limbah akuakultur.  Teknologi water  system recirculation merupakan salah satu alternatif dalam mengatasi masalah kualitas
air  dalam  akuakultur  (Rachmawati et  al. ,
2015). Sistem resirkulasi akuakultur ( Recirculation Aquaculture System ) merupakan  sistem  yang  memanfaatkan ulang  air  yang  telah  digunakan  dengan resirkulasi melewati sebuah filter, sehingga sistem ini bersifat hemat air. Filter di dalam sistem  ini  berfungsi  mekanis  untuk menjernihkan  air  dan  berfungsi  biologis untuk  menetralisasi  sewa  amonia  yang toksik  menjadi  sewa  nitrat  yang  kurang toksik  dalam  suatu  proses  yang  disebut nitrifikasi. Berhasil tidak budidaya ikan di dalam  sistem  resirkulasi  sangat  ditentukan oleh  baik  tidak  fungsi  nitrifikasi  di  dalam sistem tersebut (Samsundari dan Wirawan, 2013; Prayogi et al ., 2019).
Kesuksesan sistem resirkulasi tergantung  pada  efektivitas  sistem  dalam menangani atau mengolah limbah budidaya terutama  yang  berupa  limbah  organik. Proses  pengolahan  limbah  pada  sistem resirkulasi dapat berupa filtrasi fisik, filtrasi biologi  dan  filtrasi  kimia.  Dalam  sistem resirkulasi proses filtrasi biologi merupakan hal  yang  paling  penting.  Bakteri  berperan sebagai agen pengendali biologi yaitu dapat memperbaiki kualitas air melalui pendegradasian  bahan  organik.  Bakteri sebagai  pengendali  hayati  bersifat  sangat spesifik  (Prayogo et  al., 2012)  dengan demikian  perlu  dianalisis  peranan  bakteri pendegradasi bahan organik. Hasil analisis bakteri tersebut merupakan spesies bakteri indigenos  yang  dapat  digunakan  untuk memperbaiki kualitas air melalui pendegradasian  bahan  organik  pada budidaya lele dumbo ( C. gariepinus) pada sistem resirkulasi.

## METODOLOGI
Waktu dan Tempat
Penelitian
dilaksanakan pada
Desember  2018  –  Januari  2019  di  Desa Sumurgung,  Kecamatan  Tuban  Kabupaten Tuban  -  Jawa  Timur  dan  Laboratorium Penguji UPT Pengembangan Budidaya Air Payau Dinas Kelautan dan Perikanan Jawa Timur, Bangil, Pasuruan.

## Materi Penelitian
Materi yang digunakan adalah materi untuk  perhitungan  jumlah  sel  bakteri, Isolasi  bakteri  dan  pewarnaan  gram. Parameter  lingkungan  yang  diukur  dalam penelitian ini adalah suhu, oksigen terlarut DO, pH, dan amonia.

## Rancangan Penelitian
Penelitian  analisis  komunitas  bakteri di bioball pada  budidaya  lele  dumbo  ( C. gariepinus ) sistem resirkulasi menggunakan 3 unit resirkulasi. Penelitian ini dilaksanakan selama 60 hari.

## Prosedur Kerja
Kolam terpal bundar dengan diameter 1  m  dan  ketinggian  kolam  1  m  sebagai wadah  budidaya.  Filter  yang  digunakan adalah dengan swirl filter dan filter biologi dengan bioball  filter .  Jumlah bioball di dalam  bak  filter  628  buah  per  unit.  Pada outlet wadah  budidaya  dipasang stop  kran untuk menahan laju air sampai air di wadah budidaya.  Air  dari outlet dihubungkan menggunakan pipa PVC 1,5” ke swirl filter , kemudian  dari swirl  filter dihubungkan dengan  pipa  PVC  1”  ke bioball  filter .  Air dari bioball  filter dialirkan  kembali  ke wadah  budidaya  dengan  bantuan airlift system .

## Pengamatan Morfologi Koloni Bakteri
Pengamatan  morfologi  yaitu  dengan mengamati  bentuk,  susunan  dan  warna suatu  koloni  dari  isolat  bakteri.  Menurut Dwidjoseputro  (2005),  morfologi  koloni bakteri  yang  tumbuh  di  permukaan  media memiliki sifat-sifat umum yaitu besar kecil koloni  seperti  titik  atau  bahkan  melebar sampai menutup permukaan media, bentuk koloni  seperti  bulat  atau  memanjang,  tepi koloni  rata  atau  tidak  rata,  kenaikan permukaan  timbul  atau  rata  dengan permukaan  medium  dan  halus-kasar permukaan.
Pengamatan morfologi koloni bakteri dilakukan  secara  langsung  menggunakan alat  bantu loop pada  isolat  bakteri  yang telah diinkubasi pada suhu 32°C selama 24
jam.  Pengamatan  morfologi  dilakukan secara  aseptik  untuk  mencegah  terjadi kontaminasi.

## Pengamatan Isolat Mikroskopis
Setelah dilakukan pengamatan mikroskopis didapatkan hasil yaitu terdapat 2  jenis  bakteri  yang  menunjukkan  gram negatif  dan  terdapat  10  jenis  bakteri  yang menunjukkan  gram  positif.  Bakteri  pada tiap  isolat  menunjukkan  hasil  bentuk bakteri  yaitu  bacilli  (basil/batang)  dan Cocci (kokus/bulat).
Menurut  pernyataan  dari  Sardiani et al. (2015), jika dilihat di bawah mikroskop, bakteri  gram  positif  akan  berwarna  ungu sedangkan  bakteri  gram  negatif  akan berwarna  merah.  Perbedaan  reaksi  kedua golongan bakteri tersebut terhadap pewarnaan  gram  disebabkan  bakteri  gram
positif memiliki dinding sel yang lebih tebal yang  terdiri  dari  peptidoglikan  dan  asam teikoat  dibandingkan  dengan  bakteri  gram negatif yang mengandung sedikit peptidoglikan dan bak lipid.

## Analisis Data
Data  yang  telah  dikumpulkan  dari penelitian ini dianalisis secara deskriptif.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Kepadatan Bakteri
Penelitian  analisis  komunitas  bakteri di  kolam  pada  budidaya  lele  dumbo  ( C. gariepinus ) sistem resirkulasi, perhitungan jumlah  koloni  bakteri  dilakukan  dengan metode hitung cawan ( Total Plate Count ). Hasil  perhitungan  jumlah  koloni  dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Hasil perhitungan jumlah koloni (CFU/ml). No  Kolam  Hari ke- Kode Sampel Kode Uji  Total Bakteri (CFU/ml) 1 1 0 K1H0 Air Kolam 186 5.7x10 3 2 30 K1H30 Air Kolam 189 8.3x10 3 3 60 K1H60 Air Kolam 191 3.1x10 3 4 2 0 K2H0 Air Kolam 192 3.2x10 3 5 30 K2H30 Air Kolam 195 3.5x10 3 6 60 K2H60 Air Kolam 197 3.7x10 3 7 3 0 K3H0 Air Kolam 198 1.4x10 3 8 30 K3H30 Air Kolam 201 1.7x10 3 9 60 K3H60 Air Kolam 203 3.6x10 3
Tabel di atas, pada kolam 1 di hari ke- 0 hingga hari ke-30 menunjukkan kenaikan jumlah kepadatan. akan tetapi pada hari ke- 60 terjadi penurunan jumlah koloni. Jumlah koloni  bakteri  pada  awal  hingga  akhir pemeliharaan  di  kolam  2  dan  3  jumlah koloni  bakteri  menunjukkan  peningkatan jumlah di setiap waktu pengambilan sampel
karena  pertumbuhan  bakteri  selama penelitian

## Pengamatan Morfologi Koloni Bakteri
Bentuk  morfologi  isolat  bakteri meliputi  warna  koloni,  tepian  koloni,  dan bentuk koloni dapat dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2. Morfologi koloni bakteri. No  Kolam Hari Ke- Morfologi Koloni Bentuk Tepi Warna 1 1 0 Oval Bulat Tidak rata Rata Oren Krem 2 30 Bulat Tidak rata Krem 3 60 Bulat Rata Krem 4 2 0 Bulat Tidak rata Krem 5 30 Bulat Tidak rata Krem 6 60 Bulat Rata Krem 7 3 0 Bulat Bulat Rata Rata Krem Oren 8 30 Bulat Bulat Tidak rata Rata Krem Krem 9 60 Bulat Oval Tidak rata Tidak rata Oren Krem

## Pengamatan Isolat Mikroskopis
Pewarnaan  gram  dan  pengamatan bakteri  di  bawah  mikroskop  merupakan salah  satu  pengamatan  secara  mikroskopis yang  termasuk  dalam  tahapan  identifikasi. Pengamatan  secara  mikroskopis  dilakukan
untuk  mengetahui  jenis  gram  dan  bentuk bakteri. Hasil pengamatan pewarnaan gram pada  mikroskop  dapat  dilihat  pada.  Hasil pengamatan  uji  gram  dan  bentuk  bakteri dapat dilihat pada Tabel 3.
Tabel 3.   Hasil pengamatan mikroskopis uji gram.
No Kolam Hari Ke- Kode Sampel Kode Uji Hasil Pewarnaan Hasil Bentuk Bakteri 1 1 0 K1H0 Air Kolam 186a 186b Ungu Ungu Positif Positif Bacilli Bacilli 2 30 K1H30 Air Kolam 189 Ungu Positif Bacilli 3 60 K1H60 Air Kolam 191 Merah Negatif  Bacilli 4 2 0 K2H0 Air Kolam 192 Ungu Positif Bacilli 5 30 K2H30 Air Kolam 195 Merah Negatif  Bacilli 6 60 K2H60 Air Kolam 197 Merah Negatif  Bacilli 7 3 0 K3H0 Air Kolam 198a 198b Ungu Ungu Positif Positif Cocci Bacilli 8 30 K3H30 Air Kolam 201a 201b Ungu Ungu Positif Positif Cocci Bacilli 9 60 K3H60 Air Kolam 203a 203b Ungu Ungu Positif Positif Bacilli Bacilli Setelah didapatkan hasil pengamatan mikroskopis  selanjutnya  dilakukan  uji biokimia yang bertujuan untuk mengetahui jenis-jenis bakteri yang teridentifikasi pada
saat  penelitian.  Uji  biokimia  dapat mengetahui  karakteristik  bakteri  dalam mereduksi unsur glukosa, protein, dan urea.
Adapun  bakteri  yang  teridentifikasi dapat  dilihat  pada  Tabel  4.  Pada  uji biokimia ditemukan beberapa bakteri yang merupakan  bakteri  patogen,  akan  tetapi
bakteri  yang  mendukung  keberlangsungan ekosistem  masih  mendominasi  merupakan bakteri nitrifikasi. Tabel 4. Hasil identifikasi bakteri. No  Kolam Hari Ke- Kode Sampel Kode Uji  Spesies Bakteri 1 1 0 K1H0 Air Kolam 186a 186b Bacillus subtilis Bacillus megaterium 2 30 K1H30 Air Kolam 189 Bacillus subtilis 3 60 K1H60 Air Kolam 191 Empedobacter brevis 4 2 0 K2H0 Air Kolam 192 Bacillus subtilis 5 30 K2H30 Air Kolam 195 Sphingomonas paucimobilis 6 60 K2H60 Air Kolam 197 Empedobacter brevis 7 3 0 K3H0 Air Kolam 198a 198b Staphilococus vitulus Bacillus magetarium 8 30 K3H30 Air Kolam 201a 201b Staphilococus xylosus Bacillus cereus 9 60 K3H60 Air Kolam 203a 203b Bacillus subtilis Bacillus licheniformis

## Parameter Penunjang Kualitas Air
Penelitian  ini  didapatkan  hasil  nilai rata-rata  pada  masing-masing  parameter kualitas air (suhu, DO, pH, amonia, nitrat), antara  lain:  pengukuran  suhu  pada penelitian  ini  dilakukan  dua  kali  sehari selama 60 hari yaitu pada waktu pagi hari dan  sore  hari.  Pengukuran  suhu  dilakukan di  kolam  pemeliharaan, swirl  filter dan bioball  filter dengan  tujuan  untuk mengetahui  perbedaan  fluktuasi  suhu  di ketiga  wadah  dalam  satu  unit  resirkulasi. menunjukkan  bahwa  rata-rata  suhu  di kolam  pemeliharaan  selama  penelitian antara 28,7 – 29,6°C.
Suhu rata-rata pada pagi hari di kolam 1 yaitu 28,7°C, di kolam 2 yaitu 28,9°C dan di  kolam  3  yaitu  28,9°C.  Suhu  rata-rata pada sore hari di kolam 1 yaitu 29,3°C, di kolam 2 yaitu 29,5°C dan di kolam 3 yaitu 29,6°C.  Jika  dilihat  perbedaan  suhu  pada pagi  hari  dan  sore  hari  maka  lebih  tinggi suhu  pada  sore  hari.  Hal  ini  dikarenakan pengukuran  suhu  di  pagi  hari  dilakukan sebelum ada sinar matahari dan pengukuran suhu  di  sore  hari  masih  terpapar  sinar matahari  sehingga  menyebabkan  suhu  di perairan meningkat.
Pengukuran  oksigen  terlarut  pada penelitian ini menunjukkan bahwa rata-rata oksigen  terlarut  di  kolam  pemeliharaan selama  penelitian  antara  4,3  -  4,8  mg/l. Oksigen terlarut rata-rata pada pagi hari di kolam 1 yaitu 4,6 mg/l ,di kolam 2 yaitu 4,6 mg/L  dan  di  kolam  3  yaitu  4,7  mg/L. Oksigen terlarut rata-rata pada sore hari di kolam 1 yaitu 4,8 mg/L, di kolam 2 yaitu 4,4 mg/L dan di kolam 3 yaitu 4,3 mg/L. Dan untuk pengukuran pH menunjukkan bahwa rata-rata pH di kolam pemeliharaan selama penelitian yaitu 7,6. Nilai pH rata-rata pada pagi hari di kolam 1 yaitu 7,6, di kolam 2 yaitu 7,6 dan di kolam 3 yaitu 7,6. pH rata- rata pada sore hari di kolam 1 yaitu 7,6, di kolam 2 yaitu 7,6 dan di kolam 3 yaitu 7,6. Pengambilan  sampel  air  untuk pengukuran amonia dilakukan pada hari ke 0,  15,  30,  45  dan  60.  Pengukuran  amonia dilakukan  di  kolam  pemeliharaan, swirl filter dan bioball filter dengan tujuan untuk mengetahui perbedaan fluktuasi amonia di ketiga  wadah  dalam  satu  unit  resirkulasi. Hasil  pengukuran  amonia  diperoleh  grafik yang dapat dilihat pada Gambar 1.
Gambar 1.  Grafik fluktuasi amonia di kolam pemeliharaan.
Gambar 2.  Grafik fluktuasi amonia di swirl filter .
Gambar  2  diketahui  konsentrasi amonia  yang  berada  di  kolam  penelitian, swirl filter dan bioball filter selama 60 hari masa  pemeliharaan.  Konsentrasi  amonia pada  kolam  penelitian  1  terendah  sebesar 0,16  mg/l  dan  tertinggi  0,48  mg/l,  pada kolam  penelitian  2  konsentrasi  amonia terendah  sebesar  0,01  mg/l  dan  tertinggi sebesar  0,25  mg/l  dan  konsentrasi  amonia pada  kolam  penelitian  3  terendah  sebesar 0,02  mg/l  dan  tertinggi  sebesar  0,49  mg/l. Konsentrasi  amonia  pada swirl  filter 1 terendah  sebesar  0,03  mg/l  dan  tertinggi sebesar  0,29  mg/l,  pada swirl  filter 2 konsentrasi  amonia  terendah  sebesar  0,08 dan tertinggi 0,46 mg/l dan pada swirl filter 3 konsentrasi amonia terendah sebesar 0,2 dan tertinggi sebesar 0,91 mg/l. Kemudian
konsentrasi  amonia  pada bioball  filter 1 terendah  sebesar  0,18  mg/l  dan  tertinggi sebesar  0,28  mg/l,  pada bioball  filter 2 konsentrasi  amonia  terendah  sebesar  0,03 mg/l dan tertinggi sebesar 0,3 mg/l dan pada bioball filter 3 konsentrasi amonia terendah sebesar 0,08 mg/l dan tertinggi sebesar 0,37 mg/l.
Nilai  amonia  pada  kolam 3 menunjukkan  nilai  tertinggi  Hal  ini disebabkan  karena  padat  tebar  yang  tinggi sehingga  berimplikasi  pada  tinggi  bahan organik.  Akan  tetapi  disisi  lain  hal  ini sangat  baik  untuk  pertumbuhan  bakteri. Terbukti bahwa kepadatan bakteri tertinggi ada pada kolam 3 dan bakteri nitrifikasi bak ditemukan juga pada kolam 3.
Gambar 3.  Grafik fluktuasi amonia di bioball filter .
Gambar  3  menunjukkan  bahwa  rata- rata amonia di kolam pemeliharaan selama penelitian  antara  0,17  –  0,60  mg/l.  Nilai amonia rata-rata di kolam 1 yaitu 0,27 mg/l, di kolam 2 yaitu 0,17 mg/l dan di kolam 3 yaitu  0,60  mg/l.  Nilai  amonia  selama penelitian  masih  dalam  kisaran  yang  tidak berbahaya  bagi  kelangsungan  hidup  ikan lele dumbo ( C. gariepinus ).
Hal  ini  sesuai  dengan  penelitian Makmur dan Fahrur (2011), amonia bebas yang  tidak  terionisasi  bersifat  toksik terhadap hewan akuatik. Toksisitas amonia terhadap organisme akuatik akan meningkat jika  terjadi  penurunan  kadar  oksigen terlarut, pH dan suhu. Kadar amonia yang rendah  yaitu  <2  mg/l  pada  suatu  perairan sangat  baik  untuk  kehidupan  biota budidaya.  Menurut  Pelczar et  al. (2005), apabila bakteri Nitrosomonas mulai tumbuh secara  perlahan  amonia  menurun  karena amonia  mulai  dikonsumsi  oleh  bakteri Nitrosomonas .

## KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan
Spesies yang ditemukan pada kolam 1 yaitu Bacillus subtilis, Bacillus megaterium , Bacillus subtilis , dan Empedobacter brevis. Pada kolam 2 spesies yang  ditemukan  yaitu Bacillus  subtilis ,
Spingomonas
paucimobilis , dan Empedobacter brevis. Pada kolam 3 spesies yang  ditemukan  yaitu Staphilococus vitulus , Bacillus  megaterium , Stapilococus
xylosus,  Bacillus  cereus,  Bacillus  subtilis , dan Bacillus lincheniformis.

## Saran
Perlu  dilakukan  penelitian  lanjutan mengenai  spesies  bakteri  yang  ada  pada sistem resirkulasi budidaya lele dumbo.

## DAFTAR PUSTAKA
Dwidjoseputro,  D.,  2005. Dasar-Dasar Mikrobiologi. Penerbit  Djambatan. Jakarta. pp. 206.
Makmur,  R.  dan  Fahrur,  M.,  2011. Hubungan  antara  kualitas  air  dan plankton  di  tambak  Kabupaten Tanjung Jabung Barat Provinsi Jambi.
In Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur , pp. 961-968.
Pelczar,  M.J.,  Chan,  E.C.S.,  Krieg,  N.R., Edwards,  D.D.  and  Pelczar,  M.F., 1993. Microbiology:  concepts  and applications (Vol.  182).  New  York:
McGraw-Hill.
Prayogi,  Y.T.,  Kusdarwati,  R.  dan Kismiyati, K., 2019. Isolasi, identifikasi  dan  presentasi  ikan  lele dumbo  (Clarias  gariepinus)  yang terinfeksi
bakteri aeromonas hydrophila  yang  dipelihara  di keramba jaring apung di Bozem Moro Krembangan,  Surabaya. Journal  of Aquaculture  and  Fish  Health , 5 (2), pp. 64-69.
Prayogo,  Rahardja,  B.S.  dan  Manan,  A., 2012. Eksplorasi bakteri indigen pada pembenihan ikan lele dumbo ( Clarias
sp.) sistem resirkulasi tertutup. Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan , 4 (2), pp. 193-198. Rachmawati, D., Samidjan, I. dan Setyono, H.,  2015.  Manajemen  kualitas  air media budidaya ikan lele sangkuriang ( Clarias  gariepinus )  dengan  teknik probiotik  pada  kolam  terpal  di  Desa
Vokasi Reksosari, Kecamatan Suruh, Kabupaten Semarang. PENA Akuatika:  Jurnal  Ilmiah  Perikanan dan Kelautan , 12 (1), pp. 24 – 32.
Samsundari,  S.  dan  Wirawan,  G.A.,  2013. Analisis  penerapan  biofilter  dalam sistem  resirkulasi  terhadap  mutu kualitas  air  budidaya  ikan  sidat ( Anguilla  bicolor ). Jurnal  Gamma ,
8 (2), pp. 86 – 97.
Sardiani,  N.,  Litaay,  M.,  Budji,  R.G., Priosambodo,  D.,  Syahribulan  dan Dwyana,  Z.,  2015.  Potensi  tunikata
Rhopalaea sp.  sebagai  sumber inokulum
bakteri endosimbion
penghasil  antibakteri. Jurnal  Alam
dan Lingkungan , 6 (11), pp. 1-10.