## EFEKTIFITAS BAKTERI NITRIFIKASI DAN DENITRIFIKASI PADA LIMBAH ORGANIK BUDIDAYA UDANG VANNAMEI

## THE EFFECTIVENESS OF NITRIFICATION AND DENITRIFICATION BACTERIA ON ORGANIC WASTE OF VANNAMEI SHRIMP CULTIVATION
Abdul Haris Sambu 1 ,Abdul Malik 1 ,Asni Anwar 1
1, 2,3 Dosen Program Studi Budidaya Perairan, Universitas Muhammadiyah Makassar
* Email : malik@unismuh.ac.id ,

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan menganalisis konsentrasi senyawa nitrogen anorganik (NH 3 , NO 2 dan NO 3 )  dengan  memanfaatkan  bakteri  nitrifikasi  dan  denitrifikasi.    Penelitian  dilakukan  mulai bulan Januari sampai Maret 2021 di laboratorium Program Studi Budidaya Perairan Fakultas Pertanian Universitas Muhammadiyah Makassar.  Percobaan menggunakan 3 perlakuan 4 kali ulangan,  sehingga  berjumlah  12  percobaan,  sampel  yang  digunakan  yaitu  limbah  tambak. Hasil yang didapatkan bahwa perlakuan bakteri nitrifikasi dan denitrifikasi dapat menurunkan kandungan  senyawa  amonia  0,15  mg/L  dan  senyawa  nitrat  menjadi  3,8  mg/L.    Berdasarkan uji regresi terdapat hubungan erat antara kandungan amonia, nitrit dan nitrat diawal dan akhir penelitian.
Kata kunci : Bioremediasi, Bakteri, Mikroorganisme, Limbah .

## ABSTRACT
This  study  aims  to  analyze  the  concentration  of  inorganic  nitrogen  compounds (NH 3 ,  NO 2 , and  NO 3 ) using  nitrifying  and  denitrifying  bacteria.    The  research  was  conducted  from January  to  March  2021  in  the  laboratory  of  Aquaculture  Study  Program,  Faculty  of Agriculture, University of Muhammadiyah Makassar.  The experiment used  three treatments with  four  replications,  so  there  were  12  trials,  the  sample  used  is  pond  waste.    The  results obtained  that  the  treatment  of  nitrifying  and  denitrifying  bacteria  can  reduce  the  content  of ammonia compounds 0,15 mg/L and nitrate compound to 3.8 mg/L.  Based on the regression test,  there  is  a  close  relationship  between  the  content  of  ammonia,  nitrite,  and  nitrate  at  the beginning and the end of the study.
Keywords : Bioremediation;  Bacteria; Microorganisms;  Waste

## PENDAHULUAN
Udang vannamei masuk ke Indonesia,  diintroduksi  dan  dibudidayakan mulai awal tahun 2000-an dengan menunjukkan hasil yang menggembirakan.
Masuknya  udang  vannamei  ini  telah menggairahkan
kembali usaha pertambakan  Indonesia  yang  mengalami kegagalan budidaya akibat serangan penyakit, terutama bintik putih ( white spot ) telah  menyerang  tambak-tambak udang
windu  (Azmi et  al .,  2017),  baik  yang dikelola secara tradisional maupun intensif meskipun telah menerapkan teknologi tinggi dengan fasilitas yang lengkap.  Daya tarik  udang  vannnamei  sebagai  udang budidaya  karena  tahan  terhadap  penyakit dan  produktifitasnya  yang  tinggi  ,serta tersedia  teknologi  produksi  induk  atau benih  bebas  penyakit  serta  kebutuhan kandungan  protein  pakan  yang  relatif rendah  (Sudrajat  dan  Wedjatmiko  2010).
Di  Lampung,  udang  vannamei  mulai menjadi  spesies  alternatif  bagi  petambak untuk  dibudidayakan  (Putri et  al .,  2020).
Beberapa  perusahaan  besar  yang  bergerak dalam  agrobisnis  udang  mulai  mencoba membudidayakan  udang  vannamei  untuk meningkatkan  produktifitas  tambaknya, begitu juga dengan tambak-tambak tradisional dan  semi  intensif  mulai mengalihkan jenis spesies yang dibudidayakan  dengan  udang  vannamei (Purnamasari et  al .,  2017;  Hermawan et al .,  2020;  Husada,  2020;  dan  Priyono,
2020).
Udang vannamei mempunyai beberapa  keunggulan  dibanding  spesies udang  lainnya  yaitu,  produktivitasnya mencapai lebih dari 13.600 kg/ha,
produktivitas  yang tinggi ini karena udang vannamei
mempunyai beberapa keunggulan dibanding spesies jenis lainnya, antara lain: tingkat kelulushidupan tinggi, ketersediaan benur yang berkualitas,  kepadatan  tebar  tinggi,  tahan penyakit  dan  konversi  pakan  rendah. Tingkat  kelulushidupan  udang  vannamei bisa  mencapai  80-100%,  menurut  Boyd dan  Clay  (2002),  tingkat  kelulusan hidupannya  mencapai  91%.  Tingginya tingkat kelulushidupan karena benih udang vannamei sudah dapat diperoleh dari induk yang sudah berhasil didomestikasi sehingga  benur  yang  dihasilkan  tidak  liar dan  tingkat kanibalisme rendah,  selain  itu kebutuhan  kandungan  protein  pakan  yang relatif  rendah  (Boyd  dan  Clay  (2002)  ; Amri dan  Kanna (2008) dan   Sudrajat dan Wedjatmiko (2010)). Akibat dari kepadatan  yang  tinggi,  maka  akan  terjadi akumulasi  bahan  organik  yang  tinggi  juga dalam  media  budidaya  udang  (Syafaat et al ., 2012)Syah et al ., 2014).  Hal ini dapat menyebabkan penurunan kualitas air sebagai  akibat  dari  tingginya  kandungan
senyawa  nitrogen  anorganik,  baik  yang berasal dari metabolisme (ekskresi) udang, sisa  –sisa  pakan  (un  eaten  feed),  kotoran (feses)  udang,  alga  yang  mati  dan  bahan- bahan  organik  lainnya  (Durborow, et al .,1997).    Kondisi  ini  menyebabkan terjadinya  akumulasi  kandungan  senyawa amonia  (NH 3 ),  nitrit  (NO 2 )  dan  nitrat (NO 3 ),  yang  pada  konsentrasi  tertentu bersifat  toksik  pada  udang  (Wulandari et al .,  2015).    Kualitas  air  yang  rendah  juga akan menjadi stressor munculnya serangan beberapa  penyakit  bakterial  maupun  viral yang  dapat  menyebabkan  kematian  udang secara massal, sehingga dapat menurunkan jumlah produksi udang.
Permasalahan  tersebut  dapat  diatasi dengan perbaikan kualitas air dari kontaminasi  bahan  organik  atau  anorganik menggunakan organisme hidup yang dapat menguraikan atau merombak limbah dalam tambak  menjadi  senyawa-senyawa  yang tidak membahayakan udang dalam menurunkan  kualitas  air,  proses  biologis ini sering disebut bioremediasi.  Salah satu bahan yang digunakan untuk agen bioremediasi  ini  yaitu  mikroorganisme seperti bakteri nitrifikasi ( Nitrosomonas sp. dan Nitrobakteri )  dan  bakteri  denitrifikasi (Devaraja et  al .,  2002).    Adanya  bakteri nitrifikasi  amonia  yang  bersifat  toksik dapat dioksidasi menjadi nitrat(Yuka et al ., 2021).    Selain  itu  nitrat  dapat  diambil langsung oleh alga sebagai sumber nutrien.
Pendekatan  mekanisme  bioremediasi  yang dilakukan  adalah  pengontrolan  senyawa nitrogen  anorganik  pada  sistem  budidaya udang. Perkembangan bioteknologi mikroba dalam sistem bioremediasi pendekatannya  banyak  berlandaskan  pada aktivitas  mikroba  yang  berperan  pada siklus nitrogen (Naskah, 2019).
Proses pengendalian senyawa nitrogen  diperairan  (amonia,  nitrit  dan
nitrat)  dengan  aktivitas  mikroba  tersebut tidak  menghasilkan  produk  samping  N 2 O yang akan berdampak negatif bagi lingkungan.    Salah  satu  produk  akhir  dari reduksi  nitrat  ditentukan  oleh  keberadaan dan  dominasi  bakteri  agen  bioremediasi pada  lingkungannya.    Penelitian  ini bertujuan menganalisis konsentrasi senyawa  nitrogen  anorganik  (NH 3 ,  NO 2 dan  NO 3 )  dengan  memanfaatkan  bakteri nitrifikasi dan denitrifikasi.

## METODE PENELITIAN Waktu dan Tempat
Penelitian  dilakukan  mulai  bulan Januari sampai Maret 2021 di laboratorium Program Studi Budidaya Perairan Fakultas Pertanian Universitas Muhammadiyah Makassar,  sedangkan  analisis  kualitas  air dilakukan  di  Laboratorium  Kualitas  Air, Universitas Hasanuudin.

## Alat dan Bahan
Alat  dan  bahan  yang  digunakan dalam percobaan nitrifikasi dan denitrifikasi  adalah:  limbah  tambak  udang intensif  30 liter ,  reagen  untuk  analisis kualitas air laut dan limbah tambak, reagen untuk  pengujian  mikroba  air  laut  sebagai pengencer  360 liter ,  limbah  tambak, tepung  agar  dan  nutrient  untuk  media pertumbuhan  mikroba.  Sedangkan  alat yang  digunakan  adalah:  wadah  percobaan 12  buah  (kapasitas  30 liter ),  aerator  72 unit ,  botol  contoh  12  buah  (250 ml ), autoklaf,  filter  membran,  pompa  vakum, furnacer,  gelas  ukur,  erlenmeyer,  pipet tetes  dan  volumetrik,  tabung  ulir,  cawan petri,  neraca  sartorius,  spektrofotometer, mikroskop,  inkubator,  mikrogen  GN-ID dan  buku  identifikasi  bakteri.    Limbah tambak  yang  digunakan  dalam  percobaan nitrifikasi  ini  diambil  dari  3  lokasi budidaya  udang  intensif  di  Kabupaten Pangkep.

## Prosedur Percobaan
Prosedur  percobaan  adalah  sebagai berikut: pertama, Limbah  tambak  dan  air laut  pengencer  segera  diukur  kadar ammonia,  nitrit  dan  nitrat  di laboratorium; kedua ,  Air  laut  pengencer  disterilisasi untuk  media  perlakuan  kontrol  dan  diukur kadar  ammonia,  nitrit  dan  nitrat; ketiga , Pengenceran  limbah  tambak  dilakukan untuk  membuat  perlakuan  T0  (limbah tambak  diencerkan  dengan  air  laut  steril mikroba dengan kadar TSS 100 ppm ), dan perlakuan  A1  –  C3  dengan  kadar  TSS dalam media percobaan: 100, 200  dan 300 ppm;  keempat ,  Kemudian  ditempatkan dalam  12  wadah  terbuka  dengan  volume total 360 liter dan diberikan  aerasi dengan 72  unit  aerator; kelima ,  Pengambilan contoh  dimulai  setelah  3  hari  percobaan dilakukan  untuk  melihat  apakah  sudah terjadi proses nitrifikasi atau belum. Pengu kuran  kadar  ammonia,  nitrit  dan  nitrat dilakukan  sebanyak  2  kali  dalam  waktu  7 hari  untuk  mengetahui  laju  nitrifikasi, kemudian  dilakukan  kembali  percobaan untuk  melihat  efektivitasnya  membentuk senyawa  nitrat  dalam  media  steril  limbah tambak  yang  diencerkan  dengan  air  laut steril.

## Metode Pengukuran Sampel
Pengukuran  parameter  suhu  dan salinitas  menggunakan Water  Quality Checker Horiba U-10 (Jepang). Pengamatan  dilakukan  secara  in-situ  pada saat  pengambilan  contoh  air.  Sedangkan untuk  kandungan  senyawa  amonia,  nitrit dan  nitrat  dilakukan  di  laboratirum Kualitas Air, Universitas Hasanuddin.
Populasi bakteri heterotrofik dihitung  menggunakan  perhitungan  cawan tebar  dengan  pengenceran  bertingkat  pada media SWCA ( Sea Water Complete Agar ).

## Analisis Amonia
Pengukuran  konsentrasi  amonia digunakan dasar kolorimetri, metode
phenate (Cleseri et  al .  1989).    Senyawa amonia dalam larutan basa akan dioksidasi oleh hipoklorit membentuk monokloramin. Senyawa  tersebut  akan  bereaksi  dengan fenol,  yang  dikatalis  oleh  nitroprusid menjadi indofenol yang berwarna biru dan dapat diukur dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 640 nm.
Presentase  jumlah  amonia  yang teroksidasi  dan  senyawa  nitrat  atau  nitrit yang  terbentuk  dihitung  dengan  rumus sebagai berikut :
[AK-AP]
[AO] %        =                  x 100
[AK]
Keterangan : AO : Presentase amonia yang teroksidasi AK : Konsentrasi amonia (media kontrol) AP : Konsentrasi amonia pada media yang diinokulasi bakteri

## Analisis Nitrit
Metode  yang  digunakan  untuk analisis  nitrit  adalah  metode  sulfanilamide (Cleseri et  al .  1989).    Penetapan  senyawa nitrit  didasarkan  pada  reaksi  diazotasi, dimana  nitrit  dengan  amina  aromatik  pada sulfanilamide akan membentuk diazonium. Senyawa  tersebut  dengan  NED  (N-1 Naphtyl ethylene diamine dihydrochloride ) membentuk gugus kromofor yang
berwarna  merah  muda  dan  dapat  diukur dengan  spektrofotometer  pada  panjang gelombang 540 nm.
Jumlah  nitrit  (NI)  yang  terbentuk adalah  jumlah  nitrit    pada  suspensi perlakuan  dikurangi  dengan  jumlah  nitrit yang  terdapat  pada  suspensi  kontrol. Persentase  jumlah  nitrit  yang  terbentuk (PNI)  dihitung  dengan  rumus  sebagai berikut :
[NIT - NIK]
[PNI] %        =                  x 100 [AK - AP]
Keterangan :
PNI  :  Presentase  jumlah  nitrit  yang terbentuk
NIT  :  Kandungan  nitrit  pada  suspensi perlakuan
NIK : Kandungan nitrit pada kontrol AK : Kandungan amonia pada kontrol AP  :  Kandungan  amonia  pada  suspensi perlakuan

## Analisis Nitrat
Metode  yang  digunakan  untuk analisis  senyawa  nitrat  adalah  metode brusin  (Cleseri et  al .  1989).    Senyawa nitrat  akan  dehidrasi  oleh  H 2 SO 4 pekat, membentuk  nitrit  yang  bersifat elektrofilik reaktif.    Senyawa  tersebut  akan  bereaksi dengan  brusin  (C 23 H 25 N 2 O 4 )  membentuk gugus  kromofor  (N-NO 2 ),  yang  akan memberi  warna  kuning  pada  brusin (Merck,  Jerman)  dan  dapat  diukur  dengan spektrofotometer  pada  panjang  gelombang 420 nm.
Jumlah  nitrat  (NT)  yang  terbentuk adalah  jumlah  nitrat    pada  suspensi perlakuan  dikurangi  dengan  jumlah  nitrat yang  terdapat  pada  suspensi  kontrol. Presentase  jumlah  nitrat  yang  terbentuk (PNA)  dihitung  dengan  rumus  sebagai berikut :
[NT - NK]
[PNA] %        =                  x 100 [AK - AP]
Keterangan : PNA : Presentase jumlah nitrat NT : Kandungan nitrat (suspensi perlakuan) NK : Kandungan nitrat pada kontrol AK : kandungan amonia pada kontrol AP  :  Kandungan  amonia  pada  suspensi perlakuan

## HASIL DAN PEMBAHASAN Kualitas air
Hasil yang didapatkan dalam penelitian ini yaitu data kualitas air seperti
salinitas  dan  suhu.    Hasil  pengukuran kualitas air disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1. Hasil pengukuran salinitas dan suhu selama penelitian. Sampel Salinitas (‰) Suhu ( 0 C) Awal Akhir Awal Akhir A1 30 32 27 27 A2 30 32 27 27 A3 30 32 27 27 rerata 30 32 27 27 B1 30 32 27 27 B2 30 32 27 27 B3 30 32 27 27 rerata 30 32 27 27 C1 30 32 27 27 C2 30 32 27 27 C3 30 32 27 27 rerata 30 32 27 27
Parameter kualitas air seperti   suhu relatif  baik untuk pertumbuhan udang dan bakteri  pada  semua  perlakuan.  Sedangkan salinitas  air  yang  tinggi  disebabkan  oleh penguapan  dan  sistem  pergantian  air  yang
tidak  sempurna,  akan  tetapi  udang  masih relatif baik untuk pertumbuhan udang.
Parameter  amonia  nitrit,  dan nitrat yang  dilakukan  dua  kali  pengukuran  yaitu diawal  dan akhir  penelitian  yang  disajikan pada Tabel 2.
Tabel 2. Hasil pengukuran amonia,nitrit dan  nitrat selama penelitian
Perlakuan Nitrit (mg/L) Nitrat(mg/L) Amonia (mg/L) Awal Akhir Awal Akhir Awal Akhir A1 0,52 0,01 1,41 1,08 0,14 0,14 A2 0,52 0,44 1,41 1,08 0,14 0,13 A3 0,52 0,63 1,41 0,71 0,14 0,11 rerata 0,52 0,36 1,41 0,96 0,14 0,13 B1 0,45 0,61 1,31 0,96 0,23 0,08 B2 0,64 0,12 1,16 1,26 0,04 0,11 B3 0,34 0,00 1,04 0,66 0,13 0,08 rerata 0,48 0,25 1,17 0,96 0,14 0,09 C1 0,59 0,00 1,91 1,05 0,14 0,09 C2 0,51 0,63 0,65 0,97 0,14 0,07 C3 0,51 0,27 1,10 1,20 0,17 0,02 rerata 0,54 0,30 1,22 1,07 0,15 0,06
Grafik 1. Slope data hasil pengukuran nitrit  pada awal penelitian
Grafik 2. Slope data hasil pengukuran nitrit  pada akhir  penelitian

## Nitrit
Berdasarkan  Tabel  2  disajikan bahwa  dari  semua  perlakuan  yaitu  A,  B, dan C kandungan nitrit pertama pengukuran cenderung lebih besar dibanding  pada  pengukuran  yang  kedua. Kisaran  nitrit  awal  berkisar  antara  0.48- 0.54  atau  nilai  rata-rata  sekitar  0.51,  yang menunjukkan bahwa perlakuan awal dengan  limbah  organik  awal  adalah  sama. Pada  pengukuran  yang  kedua  terjadi penurunan  sebesar  0.2  yaitu  menjadi  0,30. Hasil  pengukuran  nitrit  awal  dan  akhir penelitian dapat dilihat pada Gambar 1 dan 2.
Grafik slope pengukuran nitrit yang
pertama dengan persamaan
Y=2.993 X +0.018 dan R 2 =0.995 atau sebesar  99,5%,  ada  keeratan  antara kandungan nitrit dengan bakteri diawal dan akhir, dan 0,5% dari faktor lain.
Senyawa  nitrit  digunakan  sebagai salah  satu  target  yang  harus  dihilangkan atau dikurangi dari sistem perairan tambak udang,  menurut  SNI  (2006)  konsentrasi nitrit  dalam  media  budidaya  udang  adalah <  0,01  mg/L  dan  bila  melebihi  0,5  mg/l akan  bersifat  racun  (Romadhona et  al .,
2016),  dimana  senyawa  nitrit  banyak terakumulasi  pada  sistem  sedimen  atau bagian  air  yang  menggenang  (Widiyanto, 2005).      Kemampuan  bakteri  nitrifikasi dalam mengoksidasi  amonia  hampir  sama, hal  ini  ditunjukkan  oleh  berkurangnya amonia pada pengukuran akhir penelitian.

## Nitrat
Berdasarkan  Tabel  2,  disajikan bahwa  dari  semua  perlakuan  yaitu  A,  B, dan C kandungan nitrat pertama pengukuran cenderung lebih besar dibanding  pada  pengukuran  yang  kedua. Kisaran  nitrat  awal  berkisar  antara  0.65- 1.91  atau  nilai  rata-rata  sekitar  1.22-1.41. Pada  pengukuran  yang  kedua  terjadi penurunan  sebesar  dengan  nilai  sebesar 0.66-1.26  yaitu rata-rata 0.96-1.07 dengan besar  penurunan  sebesar  0.2.  Hasil pengukuran  nitrat  pada  penelitian  dapat dilihat pada Gambar 3.
Gambar 3. Slope data hasil pengukuran nitrat  pada akhir  penelitian
Gambar 5. Slope data hasil pengukuran amonia  pada akhir penelitian
Grafik  slope  pengukuran  nitrat dengan  persamaan  Y=0.676X+0.006  dan R 2 =0.999 atau sebesar 99,9%, ada keeratan antara  kandungan  nitrat  dengan  bakteri diawal dan akhir, dan 0,1% dari faktor lain. amonia  yang  teroksidasi  diubah  menjadi senyawa nitrat. Hal ini dilihat
terbentuknya  senyawa  nitrat  pada  media,
walaupun  senyawa  nitrat  yang  terbentuk masih  relatif  rendah.   Senyawa  nitrat  pada umumnya dihasilkan oleh bakteri
nitrifikasi yang berasal dari media penelitian.
Amonia
Berdasarkan  Tabel  2,  disajikan bahwa  dari  semua  perlakuan  yaitu  A,  B, dan C kandungan amonia pertama pengukuran cenderung lebih besar dibanding  pada  pengukuran  yang  kedua. Kisaran  amonia awal  berkisar  antara  0.14- 0.17  atau  nilai  rata-rata  0,15.  Pada pengukuran  yang  kedua  terjadi  penurunan sebesar  dengan  nilai  sebesar  0.02-0,09 yaitu rata-rata 0.06 dengan besar penurunan sebesar 0.09.
Hasil pengukuran amonia awal dan akhir penelitian dapat dilihat pada Gambar 4 dan 5.
Grafik  slope  pengukuran  amonia dengan  persamaan  Y=0.9834X+0.0068 dan  R 2 =0.9994  atau  sebesar  99,94%,  ada keeratan antara  kandungan amonia  dengan bakteri  diawal  dan  akhir,  dan  0,06%  dari faktor lain. Hal tersebut sejalan dengan laju mineralisasi  perubahan  amonia  menjadi nitrit oleh jenis bakteri nitrifikasi.

## Koloni bakteri
Dalam  penelitian  ini  bakteri  yang digunakan  adalah  probiotik  komersial dengan merk dagang EM 4 yang diproduksi oleh  PT  Songgo  Langit  Persada.  Dengan komposisi  setiap  1  liter  mengandung bakteri Lactobacillus  casei ,  minimum  2 juta  sel/ml, Saccharomyces  cerevisiae , minimum  3,5  juta  sel/ml.  Total  bakteri keduanya  adalah  5.5  x  10 -11 .  Hasil perhitungan  bakteri  selama  penelitian dilakukan  2  kali,  pertama  ketika  awal penelitian dan akhir penelitian.

## KESIMPULAN
Perlakuan  bakteri  nitrifikasi  dan denitrifikasi  dapat  menurunkan  kandungan senyawa  amonia  0,15  mg/L  dan  senyawa nitrat  menjadi  3,8  mg/L.    Berdasarkan  uji regresi  terdapat  hubungan  erat  antara kandungan amonia, nitrit dan nitrat diawal dan akhir penelitian.
Gambar 4. Slope data hasil pengukuran amonia  pada awal  penelitian

## DAFTAR PUSTAKA
Amri,  K.,  &  Kanna,  I.  (2008).  Budidaya Udang Vanname: Secara Intensif. Semi Intensif, dan
Tradisional .
Azmi,  F.,  Faisal,  T.  M.,  Suransyah,  A., Sinaga,  S.,  &  Firli,  A.  (2017). Identifikasi  Penyebab  Kegagalan
Panen  Petani  Tambak:  Inventory, Dan Implikasi Biosecurity Perikanan Kota Langsa. Jurnal Ilmiah Samudra Akuatika , 1 (2), 26-
36.
Alexander  M.  1999.  Introduction  to  soil microbiology.  2 nd Edition.    John
Wiley and Sons. Cornell University. New York. Boyd  AW.  1990.    Water  quality  in  pond for  aquaculture.  AuburnUniversity. Birmingham Publishing Co. Alabama 147p. Bullock  GL.  1971.    Identification  of  fish pathigenic bacteria. T.F.H.
Publication.  Inc  West  Sylvania Avenue. 41p.
Burford  MA,  Preston  NP,  Gilbert  PM, Dennison  WC.  2002.    Tracing  the fate  of  15N-enriched  feed  in  an intensive shrimp system. Aquaculture 206: 199-216. Cleseri  LS,  Greenberg  AE,  Trussel  RR.
1989.    Standard  methode  for  the examination of water and wastewater. Port city Press. Baltimore.
Devaraja TN, FM yusoff, M. Shariff. 2002. Changes in bacterial population and shrimp  production  in  pond  treated with commercial microbial
products.    Aquculture.  206  :  245  – 256.
Dugan PR. 1972.   Biochemical ecology  of water  pollution.    Plenum  Press.
New York  159p.
Durborow RM, Crosby DM, Brunson MW. 1997.  Ammonia  in  fish  ponds.
Southern  Regional  Aquaculture center.  SRAC Publ. No 463.
Hermawan,  R.,  Wahyudi,  D.,  Akbar,  M., Tanod, W. A., Salanggon, A. M., &
Adel,  Y.  S.  (2020).  Penerapan Teknologi Budidaya Udang (Litopenaeus vannamei) Semi Intensif Pada Tambak Udang Tradisional. Jces (Journal of Character Education Society) , 3 (3),
460-471. Husada, R. H. S. Y. (2020). Analisis Usaha Udang Vaname (Liopenaeus vannamei) Tambak Tradisional dengan  Sistem  Monokultur  di Kecamatan Sedati Kabupaten Sidoarjo (Doctoral dissertation, Universitas Airlangga). Putri, D. S., Affandi, M. I., & Sayekti,  W. D.  (2020).  Analisis  Kinerja  Usaha dan Risiko Petambak Udang Vaname  Pada  Sistem  Tradisional dan  Sistem  Semi  Intensif  di Kecamatan Labuhan  Maringgai Kabupaten  Lampung  Timur. JIIA (Jurnal Ilmu-Ilmu Agribisnis) , 8 (4), 625-632.
Purnamasari, I., Purnama, D., & Utami, M.
A.  F.  (2017).  Pertumbuhan  udang vaname  (litopenaeus  vannamei)  di tambak intensif. Jurnal Enggano , 2 (1), 58-67. PRIYONO,  S.  B.  (2020). Daya  Dukung Lahan  Pasir  Pesisir  di  Kabupaten Bantul  Untuk  Budidaya  Intensif Berkelanjutan Udang Vaname (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) (Doctoral dissertation,
Universitas Gadjah Mada).
Naskah  (2019). Pengaruh  Selang  Waktu
Pemberian Probiotik Terhadap
Konsentrasi  NH 3 Media  Budidaya Udang Vannamei Di Bak
Terkontrol.Skripsi. Universitas

## Hasanuddin.
Romadhona,  B.,  Yulianto,  B.,  &  Sudarno, S.  (2016).  Fluktuasi  Kandungan
Amonia  Dan  Beban  Cemaran Lingkungan
Tambak Udang Vaname  Intensif  Dengan  Teknik Panen Parsial Dan Panen
Total. Saintek Perikanan: Indonesian  Journal  of  Fisheries Science and Technology , 11 (2), 84-
93.
Sitorus,  H.,  Widigdo,  B.,  Lay,  B.  W.,  &
Soewardi,  K.  (2005).  Nitrifikasi Dalam Biodegradasi Limbah Tambak. Jurnal Ilmu-Ilmu Perairan dan Perikanan Indonesia , 12 (1), 59-67. Standar Nasional Indonesia. 2006. Produksi udang vaname (Litopenaeus  vannamei)  ditambak dengan  teknologi  Intensif.  Badan Standarisasi  Nasional.  SNI  01- 7246- 2006.
Syah,  R.,  Makmur,  M.,  &  Undu,  M.  C.
(2014).  Estimasi  beban  limbah nutrien  pakan  dan  daya  dukung kawasan  pesisir  untuk  tambak udang vaname superintensif. Jurnal Riset Akuakultur , 9 (3), 439-448.
Syafaat, M. N., Mansyur, A., & Tonnek, S.
(2012).  Dinamika  kualitas  air  pada budidaya udang
vaname
(Litopenaeus vannamei) semi-
intensif  dengan  teknik  pergiliran
pakan. Inovasi Teknologi
Akuakultur , 487-493.
Sudrajat  A  dan  Wedjatmiko.  2010.
Budidaya  Udang  di  Sawah  dan Tambak. Penebar Swadaya. Jakarta Widiyanto,  T.  2005.  Seleksi  bakteri nitrifikasi  dan  denitrifikasi  untuk bioremediasi  di  tambak  udang.
Disertasi Sekolah Pascasarjana.
Institut Pertanian Bogor. Wulandari, T., Widyorini, N., & Purnomo,
P. W. (2015). Hubungan pengelolaan  kualitas  air  dengan kandungan  bahan  organik,  NO2 dan  NH3  pada  budidaya  udang vannamei  (Litopenaeus  vannamei) di Desa Keburuhan Purworejo. Management  of  Aquatic Resources Journal (Maquares) , 4 (3), 42-48.
Yuka,  R.  A.,  Supono,  S.,  &  Setyawan,  A.
(2021). Identifikasi Bakteri
Bioremediasi  Pendegradasi  Total Ammonia  Nitrogen  (TAN). Jurnal Kelautan:  Indonesian  Journal  of Marine Science and Technology , 14 (1), 20-29.