Journal of Aquaculture and Fish Health Vol. 9(2) - June 2020 DOI : 10.20473/jafh.v9i2.17183

## Respon Pertumbuhan Kultur Mikroalga Porphyridium sp. Dalam Wadah Kaca dan Plastik Pada Skala Laboratorium
Growth Response of Porphyridium sp. Culture on Glass and Plastic Container in Laboratory
Lutfiyah Al Adawiyah 1 , Mohammad Faizal Ulkhaq 1* dan Hapsari Kenconojati 1
1 Fakultas Perikanan dan Kelautan, Kampus Banyuwangi, Universitas Airlangga, Jl. Wijayakusuma 113, Giri, Banyuwangi 68425, Indonesia

## Abstrak
Pemanfaatan  mikroalga Porphyridium sp.  mulai dikembangkan  sebagai obat  anti kanker,  anti  inflamasi,  anti bakteri,  anti  fungi,  produksi  biogas,  dan  produksi  biodiesel sehingga  perlu  dilakukan  kegiatan  kultur  untuk  menjaga kontinuitas  ketersediaan Porphyridium sp.  Penelitian  ini bertujuan  untuk  menentukan  jenis  wadah  kultur  yang menghasilkan respons pertumbuhan mikroalga Porphyridium sp. dengan biomassa tertinggi. Tahapan dalam penelitian ini yaitu  persiapan  wadah  dan  sterilisasi  media,  pembuatan pupuk diatom dan media agar, kultur Porphyridium sp. pada media  agar,  kultur Porphyridium sp.  dalam  tabung  reaksi, kultur Porphyridium sp.  dalam  masing-masing  tiga  wadah kaca  dan  plastik  steril  bervolume  10  Liter.  Hasil  penelitian menunjukkan  bahwa  kepadatan Porphyridium sp.  yang dikultur  dalam  wadah  kaca  (18,9  ±  0,21  x  10 5 sel/mL) menunjukkan  respons  pertumbuhan  yang  lebih  tinggi dibandingkan  wadah  plastik  (15,57  ±  0,03  x  10 5 sel/mL). Hal  ini  membuktikan  bahwa  kultur Porphyridium sp.  pada wadah  kaca  lebih  baik  dibandingkan  menggunakan  wadah plastik.

## Abstract
Utilization  of Porphyridium sp.  began  to  be  developed  as an  anticancer,  anti-inflammatory,  antibacterial,  antifungal, and  production of  biogas  and  biodiesel  so  that  necessary  to carry  out  culture  activities  to  ensure  continuity  of Porphyridium sp.  This  study  aims  to  determine  the  type  of culture  container  that  showed  the  best  growth  response  of Porphyridium sp. with the highest biomass. The stages in this research  were  the  preparation  of  containers  and  media sterilization,  making  diatom  fertilizers  and  agar  media,  the culture  of Porphyridium sp.  on  agar  media,  test  tube,  and glass  and  plastic  containers.  The  results  showed  that  the growth  response  of Porphyridium sp.  that  cultured  in  glass containers  (18,9  ±  0,21  x  10 5 cells/mL)  was  higher  than plastic  (15.57  ±  0,03  x  10 5 cells/ml).  This  study  indicates
*Correspondence : m-faizalulkhaq@fpk.unair.ac.id
Received : 2020-01-06 Accepted : 2020-02-18
Kata Kunci : Kultur Porphyridium, Skala laboratorium, Wadah kaca dan plastik
Keywords : Porphyridium culture, Laboratory scale, Glass and plastic container
that Porphyridium sp. was cultured in the glass is better than cultured in plastic.

## PENDAHULUAN
Larva  ikan  laut  atau  udang  yang baru menetas  hanya  dapat  mengonsumsi pakan  alami  berupa  mikroalga.  Hal  ini dikarenakan  ukuran  sel  mikroalga  yang mikroskopis  dan  sesuai  dengan  lebar bukaan mulut ikan. Selain itu, mikroalga juga  mengandung  enzim  pencernaan yang sangat dibutuhkan untuk larva ikan dimana  kondisi  saluran  pencernaannya yang  belum  tumbuh  sempurna  serta kandungan  enzim  pencernaan  yang masih  belum  lengkap  (Erlina et  al. , 2004).  Salah  satu  jenis  mikroalga  yang digunakan sebagai pakan alami larva ikan berasal  dari  genus Porphyridium .  Genus
Porphyridium merupakan mikroalga merah  yang  termasuk  dalam  kelas Rhodophyceae, hidup soliter atau berkoloni dengan menyekresikan
senyawa  polisakarida  sebagai  pelindung sel (Cs ő gör et al. , 2001).
Mikroalga
Porphyridium sp. mengandung  protein  sebesar  56%  pada kondisi  kering  (Safi et  al. ,  2013),  asam lemak  tak  jenuh eicosapentanoic  acid (EPA), docosahexanoic  acid (DHA),  dan arachidonic  acid (AA)  (Li-beisson  dan Nakamura,  2016)  serta  berbagai  jenis vitamin seperti vitamin A, B, B1, B2, B6, B12,  C,  E,  nikotinat,  biotin,  asam  folat, dan  asam  pantotenat  yang  berperan sebagai  antioksidan  (Tannin-spitz et  al. , 2005).  Selain  dimanfaatkan  sebagai pakan  alami  larva  ikan  dan  udang, mikroalga Porphyridium sp.  sudah  mulai dimanfaatkan  sebagai  obat  anti  kanker dan anti inflamasi (Patil et al. , 2007), anti bakteri  dan  anti  fungi  (Falaise et  al. , 2016),  produksi  biogas  (Mudimu et  al. , 2014),  dan  produksi  biodiesel  (Mata et al. , 2010). Mengingat pentingnya manfaat dan kegunaan dari Porphyridium sp., maka perlu dilakukan kegiatan kultur untuk  menjaga  kontinuitas  ketersediaan Porphyridium sp.
Metode  kultur Porphyridium sp. sudah mulai banyak dikembangkan untuk
memenuhi  kebutuhan Porphyridium sp. Berbagai  teknologi  dan  modifikasi metode  kultur  telah  dilakukan  untuk mempercepat pertumbuhan dan meningkatkan kapasitas produksi
Porphyridium sp.  diantaranya  modifikasi kandungan  nitrogen  dalam  pupuk  (Li et al. ,  2019),  pencahayaan  (Velea et  al. , 2011),  dan  komposisi  pupuk  (Afriza et al. , 2015).
Modifikasi  wadah  kultur  terbukti dapat
mempercepat pertumbuhan mikroalga Spirulina sp.  (Wahyuni et  al. , 2018) dan Chaetoceros calcitrans (Jannah et  al. ,  2019).  Namun,  masih  belum terdapat  laporan  penelitian  sebelumnya untuk  kultur Porphyridium sp.  sehingga diperlukan  penelitian  yang  bertujuan untuk  menentukan  jenis  wadah  kultur yang menghasilkan respons pertumbuhan mikroalga Porphyridium sp.  dengan biomassa  tertinggi.  Penelitian  ini  dapat dijadikan  acuan  bagi  para  pembudidaya yang  melakukan  kultur Porphyridium sp. agar  diperoleh  biomassa  panen  yang tinggi sehingga dapat memenuhi kebutuhan Porphyridium sp. yang semakin meningkat.

## METODOLOGI Waktu dan Tempat
Penelitian ini dilaksanakan pada 23 Januari  -  23  Februari  2018  di  Balai Perikanan  Budidaya  Air  Payau  (BPBAP) Situbondo.

## Materi Penelitian
Peralatan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  yaitu  stoples  kaca  dan plastik  bervolume  masing-masing  5  liter, cawan  petri  (Iwaki  Pyrex,  Jepang), tabung reaksi (Iwaki Pyrex, Jepang), labu Erlenmeyer (Iwaki  Pyrex,  Jepang), autoclave (Memmert,  Schwabach), filter bag (Profilter,  Indonesia),  mikroskop
(Nikon E100, Jepang), dan
hemositometer Neubauer (Assistent,
Jerman).
Bahan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  bibit Porphyridium sp.  yang  merupakan  koleksi  dari Laboratorium  Pakan  Alami  BPBAP Situbondo, air laut bersalinitas 25-35 ppt, media Bacto  Agar (Merck,  Jerman), kaporit  (Tjiwi  Kimia,  Indonesia),  pupuk Diatom/ Guillard , natrium tiosulfat (Bratachem,  Indonesia),  silikat  (Merck, Jerman),  vitamin  tiamin  dan  kobalamin (Merck, Jerman), dan akuades
(Bratachem, Indonesia).

## Rancangan Penelitian
Penelitian ini menggunakan
rancangan acak lengkap (RAL) dengan 2 perlakuan  dan  10  ulangan  yaitu  P1: kultur Porphyridium sp.  dalam  wadah kaca  dan  P2  :  kultur Porphyridium sp. dalam wadah plastik. Variabel
independen  dalam  penelitian  ini  yaitu jenis  wadah  kultur  (kaca  dan  plastik), sedangkan  variabel  dependen  yaitu respons pertumbuhan Porphyridium sp.

## Prosedur Kerja
Persiapan  Wadah  dan  Sterilisasi Media Wadah  yang  digunakan  yaitu cawan  petri,  tabung  reaksi,  dan  labu Erlenmeyer direndam  dengan  larutan kaporit  200  ppm  selama  24  jam,  dicuci dengan  detergen,  dibilas  dengan  air tawar,  dikeringkan  dan  disterilisasi dengan autoclave pada suhu 121°C, 1 atm selama  20  menit.  Sedangkan  peralatan kultur  lain  seperti  stoples  kaca,  stoples plastik, selang, dan batu aerasi direndam dalam  larutan  kaporit  200  ppm  selama 24  jam,  dicuci  dengan  detergen,  dibilas dengan  air  tawar  dan  dijemur  sampai kering.  Sterilisasi  air  laut  dilakukan dengan  penyaringan  menggunakan filter bag bertingkat  dengan  diameter  lubang mulai 1 µm sampai 5 µm dan ditampung dalam drum bervolume 250 Liter.
Sebelum  digunakan,  air  laut didesinfeksi dengan kaporit dengan dosis 20  ppm  selama  24  jam  dan  dinetralkan
dengan  natrium  tiosulfat  dengan  dosis yang  sama.  Sterilisasi  media Bacto  Agar menggunakan autoclave pada  suhu 121°C,  1  atm  selama  20  menit  (BPBAP, 2016).

## Pembuatan  Pupuk  Diatom  dan
Media Agar Pembuatan pupuk diatom
dilakukan  dengan  menghomogenkan larutan 30 gram silikat (Si); 75 g KNO 3 ; 5 g  Na 2 HPO 4 ,  5  g  Na 2 EDTA,  dan  3,15  g FeCl 3 dalam 1  liter  akuades  pada  wadah yang  berbeda,  direbus  hingga  mendidih untuk  mempercepat  kelarutan,  dan disterilisasi  dengan  autoklaf  pada  suhu 121°C,  1  atm  selama  20  menit.  Vitamin yang  terdiri  dari  tiamin  100  mg  dan kobalamin 5 mg masing-masing dilarutkan  dalam  1  liter  akuades  steril dalam wadah yang terpisah. Media kultur agar untuk Porphyridium sp. dibuat dengan
menyediakan  1000  mL  air  laut  steril dalam erlenmeyer dan  ditambahkan pupuk  Diatom/ Guillard dan  larutan silikat  masing-masing  1  mL,  diaduk hingga  tercampur  merata.  Larutan tersebut  diambil  100  mL  kemudian ditambahkan  2  g Bacto  Agar dan dipanaskan  dalam erlenmeyer sampai mendidih  sambil  diaduk  hingga  bening, lalu disterilkan dalam autoklaf pada suhu 121°C,  1  atm  selama  20  menit.  Setelah suhu  larutan  hangat  (±  30-40  °C), dicampurkan  0,1  mL  larutan  vitamin tiamin  dan  kobalamin  dan  diaduk merata,  kemudian  dituang  ke  dalam cawan petri steril (BPBAP, 2016).
Kultur Porphyridium sp.  pada Media Agar Bibit murni fitoplankton Porphyridium sp.  yang  diperoleh  dari hasil kultur sebelumnya diamati menggunakan mikroskop untuk memastikan masih dalam keadaan hidup. Sel Porphyridium sp.  yang  masih  hidup ditandai  dengan  adanya  pigmen  warna merah  dalam  selnya. Porphyridium sp. selanjutnya  ditumbuhkan  pada  media
agar  dengan  metode streak  plate atau metode  gores,  diinkubasi  pada  rak  pada suhu  ruang  (23  °C)  di  bawah  sinar cahaya  lampu  TL  36  watt  (200  lux) secara  terus-menerus  selama  72-96  jam sambil  diamati  pertumbuhannya  setiap 24 jam (Wahyuni et al. , 2018).
Kultur Porphyridium sp.  Pada Tabung Reaksi
Bibit Porphyridium sp. yang tumbuh pada  media  agar  dipindahkan  dalam tabung  reaksi  yang  sudah  berisi  air  laut steril  bersalinitas  29-30  ppt  dan  pupuk diatom  dengan  perbandingan  1:1. Tabung  reaksi  diinkubasi  pada  suhu ruang  (23  °C)  di  bawah  sinar  cahaya lampu TL 36 watt (200 lux) secara terus- menerus  selama  72-96  jam  sambil dikocok  setiap  24  jam  agar  tidak mengendap (Wahyuni et al. , 2018).

## Kultur
Porphyridium sp.  Pada
Wadah Kaca dan Plastik Inokulan Porphyridium sp.  dengan kepadatan awal 3,14 ± 0,17 x 10 5 sel/mL dari  tabung  reaksi  dipindahkan  dalam masing-masing  tiga  wadah  kaca  dan plastik  steril  bervolume  10  Liter. Sebelumnya,  wadah  kaca  dan  plastik steril diisi air laut steril bersalinitas 29-30 ppt  dan  campuran  pupuk  diatom,  silikat dan  vitamin  dengan  volume  masing- masing  2,5  Liter  dan  diaerasi.  Wadah kaca  dan  plastik  diinkubasi  pada  suhu ruang  (23  °C)  di  bawah  sinar  cahaya lampu TL 36 watt (200 lux) secara terus- menerus  selama  11  hari  sambil  diaduk setiap  24  jam  agar  tidak  mengendap. Selama masa kultur dilakukan pengecekan  kualitas  air  (suhu,  salinitas, dan  pH)  setiap  pagi  hari  serta penghitungan  kepadatan  setiap  harinya menggunakan  hemositometer  Neubauer (Jannah et  al. ,  2019).  Desain  penelitian dapat dilihat pada Gambar 1.
Gambar 1.  Desain penelitian.

## Analisis Data
Parameter  yang  diamati  yaitu kepadatan Porphyridium sp. selama masa kultur (11 hari) sebagai dasar penentuan jenis  wadah  kultur  yang  paling  optimal pada  kultur Porphyridium sp.  skala laboratorium.
Data kepadatan
Porphyridium sp. dianalisis menggunakan
Uji  T  ( α =  95%)  dengan  bantuan Microsoft Excel 2010 dan disajikan dalam bentuk  grafik  serta  dihubungkan  dengan parameter  kualitas  air  selama  kultur (suhu, pH, dan salinitas).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Respons Pertumbuhan Porphyridium sp. Pada Wadah Kaca dan Plastik
Kepadatan  sel Porphyridium sp. pada  wadah  kaca  menunjukkan  data yang  cukup  baik  (Gambar  2).  Sel Porphyridium sp.  pada  hari  pertama kultur terdapat 3,14 ± 0,17 x 10 5 sel/mL. Hal  ini  menunjukkan  adanya  fase adaptasi setelah dilakukannya penebaran bibit  pada  media  baru.  Sel-sel  pada  fase istirahat  ini  belum  membelah  sehingga populasi belum bertambah. Fase adaptasi
ini  berlanjut  sampai  hari  ke-4  masa kultur, ditunjukkan dengan data perolehan  kepadatan  sel  yang  masih stabil.  Berge et  al. (2012)  menyatakan bahwa  pada  fase  adaptasi,  mikroalga akan  menyesuaikan  diri  dengan  kondisi lingkungan  luar  yang  meliputi  suhu, kandungan nutrien, salinitas dan intensitas  cahaya.  Mulai  hari  ke  5-7 menunjukkan  peningkatan  kepadatan  sel dan  fotosintesis  terus  berlanjut  hingga mencapai  puncak  pada  hari  ke-8  yang menandakan sel Porphyridium sp. memasuki  fase  eksponensial  dengan kepadatan  mencapai  18,9  ±  0,21  x  10 5 sel/mL. Hal ini didukung oleh Das et al. , (2011)  yang  menyatakan  bahwa  pada fase  eksponensial,  sel  mikroalga  telah mampu  memetabolisme  nutrien  yang terkandung  dalam  media  kultur  untuk proses  biosintesis  sel  sehingga  mampu tumbuh dan berkembang biak.
Sel Porphyridium sp.  mengalami fase stasioner pada kultur mulai hari ke-9 yang menunjukkan penurunan kepadatan dari  18,9  ±  0,21  x  10 5 sel/mL  menjadi
16,65  ±  0,14  x  10 5 sel/mL.  Penurunan kepadatan  sel  ini  terus  berlanjut  sampai kultur hari ke-11 mencapai 6,38 ± 0,04 x 10 5 sel/mL.  Hal  ini  berkaitan  dengan terbatasnya  nutrisi  yang  cenderung semakin  menurun  akibat  tidak  adanya suplai nutrisi dari luar. Selain itu semakin padatnya  sel  yang  tumbuh  maka kompetisi  mendapatkan  nutrien,  CO 2 hasil  respirasi,  dan  ruang  gerak  semakin tinggi,  sehingga  laju  reproduksi  sel Porphyridium sp. akan semakin melambat dan  memasuki  fase  kematian  atau deklamasi  (Paes et  al. ,  2016).  Fase deklamasi  sel Porphyridium sp.  selain dengan  penurunan  kepadatan  sel  juga dapat  ditunjukkan  dengan  adanya endapan  sel-sel Porphyridium sp.  pada dinding  wadah  kaca  berwarna  merah kecokelatan dan berbuih. Kematian sel ini dapat  dipengaruhi  karena  ketersediaan nutrien  pada  media  kultur  habis  dan kandungan  sisa  metabolisme  yang semakin  banyak  dalam  media  kultur (Kawaroe et al. , 2015).
Gambar 2.  Grafik pertumbuhan Porphyridium sp. dalam wadah kaca dan plastik.
Kultur Porphyridium sp.  pada wadah  plastik  (Gambar  2)  memiliki respons  pertumbuhan  yang  serupa dengan  wadah  kaca.  Fase  adaptasi dimulai  pada  hari  ke-0  hingga  hari  ke-5 dengan kepadatan berkisar 3,46 ± 0,03 x 10 5 sel/mL  sampai  5,71  ±  0,12  x  10 5 sel/mL. Mulai hari ke-6 sampai hari ke-8 mengalami  fase  eksponensial  dengan puncak  pertumbuhan  mencapai  15,57  ± 0,03  x 10 5 sel/mL,  kemudian  mengalami fase stasioner dan kematian pada hari ke-
11 dengan  penurunan  kepadatan  sampai 5,83  ±  0,11  x  10 5 sel/mL.  Hal  tersebut menunjukkan respons pertumbuhan kultur Porphyridium sp.  pada  wadah plastik  yang  masih  normal.  Hasil penelitian serupa ditunjukkan oleh Berge et  al. (2012)  yang  melaporkan  bahwa kultur Porphyridium sp.  selama  kurang dari  15  hari  dapat  menghasilkan biomassa  yang  optimal.  Ketersediaan nutrien sangat menentukan laju pertumbuhan Porphyridium sp.  apabila
0 5 10 15 20 25 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 Ke pa da ta n ( x1 05 s el /m L) Hari Ke- Plastik Kaca
terjadi  defisiensi  nutrisi  dalam  media dapat  menurunkan  laju  pertumbuhannya (Razaghi et al. , 2014).
Pernyataan  tersebut  didukung  oleh Kathiresan et  al. (2007)  bahwa  dalam kegiatan  kultur  ketersediaan  nutrisi sangat dibutuhkan dalam laju pertumbuhan  populasi,  apabila  terjadi kekurangan nutrisi yang dibutuhkan oleh fitoplankton  dapat  terjadi  penurunan kepadatan sel bahkan kematian. Perbandingan respons pertumbuhan Porphyridium sp.  dalam  dua  wadah kultur  (kaca  dan  plastik)  ditunjukkan dengan  lebih  cepatnya  fase  adaptasi dalam  wadah  kaca  (empat  hari) dibandingkan  wadah  plastik  (lima  hari). Selain  itu,  kepadatan  sel  pada  puncak fase eksponensial pada wadah kaca (18,9 ±  0,21  x  10 5 sel/mL)  lebih  tinggi dibandingkan  wadah  plastik  (15,57  ± 0,03 x 10 5 sel/mL) pada kultur hari ke-8. Hal  ini  menunjukkan  bahwa  mikroalga Porphyridium sp. lebih mudah
beradaptasi  dan  lebih  cepat  tumbuh dalam  wadah  kaca  dibanding  wadah plastik.  Hal  ini  diduga  karena  dalam wadah  kaca  mikroalga Porphyridium sp. mendapatkan  suplai  cahaya  yang  lebih banyak  dibandingkan  wadah  plastik dikarenakan  sifat  bahan  kaca  yang mudah ditembus cahaya.
Hasil  penelitian  ini  sejalan  dengan hasil penelitian yang dilaporkan sebelumnya  oleh  Wahyuni et  al. (2018) bahwa Spirulina sp.  yang  dikultur  dalam
wadah kaca memiliki kepadatan sel pada puncak  pertumbuhan  sampai  tiga  kali lipat  dibandingkan  kultur  dalam  wadah plastik.  Penelitian  lain  pada  mikroalga jenis
Chaetoceros calcitrans juga
menunjukkan  pola  yang  serupa  jika dikultur  pada  wadah  kaca  dan  plastik (Jannah et al. , 2019).
Cahaya  yang  masuk  dalam  wadah kultur  akan  digunakan  oleh  mikroalga untuk  tumbuh  dan  fotosintesis.  Semakin banyak  jumlah  cahaya  yang  diserap sebanding dengan meningkatnya pertumbuhan Porphyridium sp.  (Durmaz et  al. ,  2007).  Intensitas  cahaya  yang masuk  juga  berpengaruh  terhadap  suhu dalam  wadah  kultur.  Suhu  pada  wadah kaca (23-25 °C) lebih tinggi dibandingkan pada  wadah  plastik  (19-20  °C).  Hal  ini menunjukkan bahwa meningkatnya temperatur wadah kultur akan mempercepat fase pertumbuhan
Porphyridium sp. (Guihéneuf dan Stengel, 2015)  dengan  toleransi  temperatur maksimal  sampai  28  °C  (Cs ő gör et  al. , 2001).

## Pengamatan Kualitas Air
Hasil  pengamatan  kualitas  air (suhu,  pH,  salinitas)  selama  kultur Porphyridium sp.  dalam  wadah  kaca  dan plastik ditampilkan pada Tabel 1. Seluruh parameter  masih  dalam  batas  toleransi mikroalga Porphyridium sp.  untuk  dapat tumbuh optimal.
Tabel 1.   Kualitas air selama kultur Porphyridium sp. Wadah Suhu (°C) Salinitas (ppt) pH Kaca 23-25 33-41 8,1-8,3 Plastik 19-20 30-32 8,3-8,4 Kisaran nilai optimal 21-26 (Golueke  dan  Oswald , 1962) 30-46 (Golueke  dan  Oswald , 1962) 6,5-8,5 (You  dan  Barnett 2004) Menurut  Bernard  dan  Rémond
(2012),  pertumbuhan Porphyridium sp. akan menurun pada suhu di bawah 13 °C sedangkan jika suhu mencapai lebih dari 31  °C  sel Porphyridium sp.  akan mengalami  kematian.  Sel Porphyridium sp.  dapat  tumbuh  pada  kondisi  air
bersalinitas  lebih  tinggi  dibandingkan dengan  salinitas  air  laut  normal.  Hal  ini disebabkan  karena  penambahan  nutrien melalui  pupuk  sehingga  mengakibatkan terbentuknya  garam  dalam  media  yang menyebabkan  salinitas  menjadi  semakin meningkat. Markou dan Nerantzis (2013)
menyatakan  bahwa  sel Porphyridium sp. dapat mentoleransi nilai kisaran salinitas yang  tinggi,  sampai  0,5-2  kali  dari salinitas air laut normal.
Kim et  al. (2017)  menjelaskan bahwa Porphyridium sp.  yang  dikultur pada  media  dengan  kisaran  salinitas antara  3,5-4,5%  menunjukkan  pertum- buhan  yang  optimal,  namun  salinitas  di atas  4,5%  dapat  menurunkan  per- tumbuhan sel Porphyridium
sp., sedangkan jika kondisi salinitas media di bawah  3,5%,  maka  sel Porphyridium sp. akan kalah berkompetisi dengan
mikroalga  lainnya  pada  kultur  terbuka. You  dan  Barnett  (2004)  menyatakan bahwa Porphyridium sp.  dapat  tumbuh pada  kisaran  pH  5,2  -  8,3  dengan  nilai optimum untuk berfotosintesis yaitu 7,5.

## KESIMPULAN
Kepadatan Porphyridium sp.  yang dikultur dalam wadah kaca (18,9 ± 0,21 x  10 5 sel/mL)  menunjukkan  respons pertumbuhan yang lebih tinggi
dibandingkan  wadah  plastik  (15,57  ± 0,03  x  10 5 sel/mL).  Fluktuasi  suhu,  pH, dan  salinitas  berpengaruh  terhadap pertumbuhan mikroalga Porphyridium sp.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Kami  mengucapkan  terima  kasih kepada  Universitas  Airlangga  atas  kerja samanya.  Penulis  juga  mengucapkan terima  kasih  kepada  BPBAP  Situbondo atas  bantuan  dan  dukungan  untuk  riset ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Afriza, Z., Diansyah, G. dan Sunaryo, A.I., 2015.  The  effects  of  giving  urea fertilizer  (CH 4 N 2 O)  with  different doses  on  cell  density  and  growth rate  of Porphyridium sp.  in phytoplankton culture on laboratory  scale. Maspari  J.  7(2), pp.  33–40.  https://dx.doi.org/10. 36706/maspari.v7i2.2439.
BPBAP  (Balai  Perikanan  Budidaya  Air
Payau),  2016.  Petunjuk  teknis produksi fitoplankton di
Laboratorium  Pakan  Alami  BPBAP Situbondo. pp. 1-15.
Berge,  T.,  Daugbjerg,  N.  dan  Hansen, P.J., 2012. Isolation and cultivation of microalgae select for low growth rate  and  tolerance  to  high  pH. Harmful  Algae , 20 ,  pp.  101-110. https://dx.doi.org/10.1016/j.hal.20 12.08.006.
Bernard,  O.  dan  Rémond,  B.,  2012.
Validation  of  a  simple  model accounting for light and
temperature  effect  on  microalgal growth. Bioresource technology , 123 , pp. 520-527. https://dx.doi.org/10. 1016/j.biortech.2012.07.022.
Cs ő gör, Z., Kiessling, B., Perner, I., Fleck, P.  dan  Posten,  C.,  2001.  Growth and product formation of Porphyridium purpureum . Journal of applied  phycology , 13 (4),  pp.  317- 324. https://doi.org/10.1023/A:
1017945513485.
Das, P., Aziz, S.S. dan Obbard, J.P., 2011. Two  phase  microalgae  growth  in the open system for enhanced lipid productivity. Renewable  Energy , 36 (9),  pp.  2524-2528. https://doi. org/10.1016/j.renene.2011.02.002 . Durmaz,  Y.,  Monteiro,  M.,  Bandarra,  N., Gökpinar, Ş . dan I ş ik, O., 2007. The effect  of  low  temperature  on  fatty acid  composition  and  tocopherols of  the  red  microalga, Porphyridium cruentum . Journal  of  Applied Phycology , 19 (3),  pp.  223-227. https://doi.org/10.1007/s10811- 006-9127-6.
Erlina,  A.,  Amini,  S.,  Endrawati,  H.  dan Zainuri,  M.,  2004.  Kajian  nutritif phytoplankton  pakan  alami  pada sistem  kultivasi  massal. ILMU KELAUTAN:  Indonesian  Journal  of Marine Sciences , 9 (4), pp. 206-210. https://doi.org/10.14710/ik.ijms.9. 4.206-210.
Falaise,  C.,  François,  C.,  Travers,  M.A., Morga, B., Haure, J., Tremblay, R., Turcotte, F., Pasetto, P., Gastineau, R.,  Hardivillier,  Y.  dan  Leignel,  V., 2016.  Antimicrobial  compounds from  eukaryotic microalgae  against
human  pathogens  and  diseases  in aquaculture. Marine  drugs , 14 (9),
p.  159.  https://doi.org/10.3390/ md14090159.
Golueke,  C.G.  dan  Oswald,  W.J.,  1962. The  mass  culture  of Porphyridium cruentum . Appl. Environ. Microbiol. ,
10 (2),  pp.  102-107.  https://aem. asm.org/content/10/2/102.
Guihéneuf,  F.  dan  Stengel,  D.B.,  2015. Towards  the  biorefinery  concept: Interaction  of  light,  temperature and nitrogen for optimizing the co- production of high-value compounds in Porphyridium purpureum . Algal  research , 10 ,  pp. 152-163.  https://doi.org/10.1016/ j.algal.2015.04.025.
Jannah,  M.,  Ulkhaq,  M.F.,  Azhar,  M.H. dan Soemarjati, W., 2019, February.  Growth  performance  of laboratory-scale Chaetoceros calcitrans in different containers. In
IOP  Conference  Series:  Earth  and Environmental  Science (Vol.  236, No.  1,  p.  012031).  IOP  Publishing. https://doi.org/10.1088/1755- 1315/236/1/012031. Kathiresan,  S.,  Sarada,  R.,  Bhattacharya, S.  dan  Ravishankar,  G.A.,  2007.
Culture  media  optimization  for growth and phycoerythrin production from Porphyridium purpureum. Biotechnology and bioengineering , 96 (3),  pp. 456-463. https://doi.org/10.1002/bit.21138. Kawaroe, M., Hwangbo, J., Augustine, D. dan Putra, H.A., 2015. Comparison of  density,  specific  growth  rate, biomass weight, and doubling time of  microalgae Nannochloropsis sp. cultivated  in  open  raceway  pond and  photobioreactor. Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation , 8 (5),  pp.  740-750. http://www.bioflux.com.ro/docs/2 015.740-750.pdf.
Kim, H.M., Oh, C.H. dan Bae, H.J., 2017. Comparison  of  red  microalgae
( Porphyridium  cruentum )  culture conditions for bioethanol production. Bioresource  technology ,
233 ,  pp. 44-50.  https://doi.org/10.
1016/j.biortech.2017.02.040.
Li-Beisson,  Y.  dan  Nakamura,  Y.,  2016.
Lipids in plant and algae
development (Vol.  86).  Berlin: Springer.  https://doi.org/10.1007/ 978-3-319-25979-6.
Li, T., Xu, J., Wu, H., Jiang, P., Chen, Z.
dan  Xiang,  W.,  2019.  Growth  and biochemical composition of Porphyridium  purpureum SCS-02 under different nitrogen concentrations. Marine drugs ,
17 (2),  p.124.  https://doi.org/10. 3390/md17020124.
Markou,  G.  dan  Nerantzis,  E.,  2013. Microalgae for high-value compounds and biofuels
production: a review with focus on cultivation  under  stress  conditions. Biotechnology  advances , 31 (8),  pp.
1532-1542. https://doi.org/10. 1016/j.biotechadv.2013.07.011.
Mata,  T.M.,  Martins,  A.A.  dan  Caetano, N.S., 2010. Microalgae for biodiesel production  and  other  applications: a review. Renewable and sustainable energy reviews , 14 (1), pp. 217-232. https://doi.org/10.1016/j.rser.200 9.07.020.
Mudimu, O., Rybalka, N., Bauersachs, T., Born,  J.,  Friedl,  T.  dan  Schulz,  R., 2014. Biotechnological screening of microalgal and cyanobacterial strains  for  biogas  production  and antibacterial and antifungal effects. Metabolites , 4 (2),  pp.  373-393. https://doi.org/10.3390/metabo40 20373.
Paes,  C.R.,  Faria,  G.R.,  Tinoco,  N.A., Castro,  D.J.,  Barbarino,  E.  dan Lourenço,  S.O.,  2016.  Growth, nutrient  uptake  and  chemical composition  of Chlorella sp.  and Nannochloropsis oculata under nitrogen  starvation. Latin  American Journal  of  Aquatic  Research , 44 (2), pp.  275-292.  https://doi.org/10. 3856/vol44-issue2-fulltext-9. Patil, V., Källqvist, T., Olsen, E., Vogt, G. dan Gislerød, H.R., 2007. Fatty acid composition  of  12  microalgae  for
possible  use  in  aquaculture  feed. Aquaculture  International , 15 (1), pp.  1-9.  https://doi.org/10.1007/ s10499-006-9060-3. Razaghi,  A.,  Godhe,  A.  dan  Albers,  E., 2014. Effects of nitrogen on growth and  carbohydrate  formation  in Porphyridium cruentum . Open  Life Sciences , 9 (2), pp. 156-162. https:// doi.org/10.2478/s11535-013-0248- z. Safi,  C.,  Charton,  M.,  Pignolet,  O., Pontalier, P.Y. dan Vaca-Garcia, C., 2013.  Evaluation  of  the  protein quality  of Porphyridium cruentum . Journal of applied phycology , 25 (2), pp.  497-501.  https://doi.org/10. 1007/s10811-012-9883-4. Tannin-Spitz,  T.,  Bergman,  M.,  van- Moppes, D., Grossman, S. dan Arad, S.M.,  2005.  Antioxidant  activity  of the  polysaccharide  of  the  red microalga Porphyridium sp. Journal of  Applied  Phycology , 17 (3),  pp.
215-222.  https://doi.org/10.1007/
s10811-005-0679-7. Velea, S.,  Ilie,  L.  dan  Filipescu,  L., 2011.
Optimization
of
Porphyridium
purpureum culture  growth  using two  variables  experimental  design: light  and  sodium  bicarbonate. UPB Sci  Bull  Series  B , 73 (4),  pp.  81-94. https://www.scientificbulletin.upb. ro/rev_docs_arhiva/full31795.pdf. Wahyuni, N., Masithah, E.D., Soemarjati, W., Suciyono, S. dan Ulkhaq, M.F., 2018. Pola Pertumbuhan mikroalga Spirulina sp.  skala  laboratorium yang dikultur menggunakan wadah yang  Berbeda. Majalah  Ilmiah Bahari  Jogja , 16 (2),  pp.  89-97. https://doi.org/10.33489/mibj.v16 i2.147. You, T. dan Barnett, S.M., 2004. Effect of
light  quality  on  production  of extracellular  polysaccharides  and growth  rate  of Porphyridium cruentum . Biochemical  Engineering Journal , 19 (3),  pp.  251-258. https://doi.org/10.1016/j.bej.2004. 02.004.