e- ISSN: 2715-033X                                           JURNAL AGROPLASMA, Vol. 10 No. 1, Mei  2023: 320-328
Eksplorasi dan Karakteristik Bakteri Endofit Asal Tanaman Handeuleum ( Graptophyllum pictum (L) Griff)
Jean Nihana Manalu 1 , Maya Mariana 2
1 Program Studi Biologi, Universitas Pendidikan Ganesha
2 Balai Pengujian Standar Instrumen Tanaman Rempah Obat dan Aromatik, Jawa Barat email:putri.manalu@undiksha.ac.id

## ABSTRACT
Handeuleum  (Graptophyllum  pictum  L.  Griff)  is  a  plant  that  is  used  as  a  medicinal  plant  with secondary metabolite compounds so that it can overcome several diseases. Exploration of endophytic bacteria in handeuleum plants needs to be done, because the content of secondary metabolites can be used  to  suppress  the  growth  of  plant  pathogens.The  purpose  of  this  study  was  to  obtain  isolates  of endophytic  bacteria  and  find  out  their  characteristics.  This  research  was  conducted  with  an exploratory  method  that  began  with  the  isolation  of  endophytic  bacteria  and  several  tests  were carried out such as hemolysis activity, hypersensitivity, gram test, chitinolytic test, phosphate solvent activity, and antagonist test.The isolation results obtained a high population of endophytic bacterial isolates, namely in the roots, as many as 8 isolates that are pathogenic in mammals, hypersensitivity tests showed no isolates that  were pathogenic in  plants, gram tests obtained as many as 24 isolates that were gram-positive, as many as 5 isolates were able to lyse phosphate, no isolates could degrade chitin,  as  many  as  2  isolates  were  antimicrobial  against  Rastolnia  solanacearum  indicated  by  the presence of clear zones and 26 isolates were able to suppress the growth of Fusarium oxysporum.
Keywords: Antimicrobial, pathogenic, hemolysis, hypersensitive, chitinolytic

## ABSTRAK
Handeuleum  (Graptophyllum  pictumL.  Griff)  merupakan  tanaman  yang  dimanfaatkan  sebagai tanaman  obat  dengan  kandungan  senyawa  metabolit  sekunder  sehingga  dapat  mengatasi  beberapa penyakit.  Eksplorasi  bakteri  endofit  pada  tanaman  handeuleum  perlu  dilakukan,  dikarenakan kandungan  metabolit  sekundernya  dapat  digunakan  untuk  menekan  pertumbuhan  patogen  tanaman. Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk  mendapatkan  isolat  bakteri  endofit  dan  mengetahui karakteristiknya.  Penelitian  ini  dilakukan  dengan  metode  eksplorasi  yang  dimulai  dengan  kegiatan isolasi bakteri endofit dan dilakukan beberapa pengujian seperti aktivitas hemolisis, hipersensitif, uji gram, uji kitinolitik, aktivitas pelarut fosfat, dan uji antagonis. Hasil isolasi diperoleh populasi isolat bakteri  endofit  yang  tinggi  yaitu  pada  bagian  akar,  sebanyak  8  isolat  yang  bersifat  patogenik  pada mamalia,  uji  hipersensitif  menunjukkan  tidak  ada  isolat  yang  bersifat  patogenik  pada  tanaman,  uji gram diperoleh sebanyak 24 isolat yang bersifat gram positif, sebanyak 5 isolat mampu melisis fosfat, tidak  ada  isolat  yang  dapat  mendegradasi  kitin,  sebanyak  2  isolat  bersifat  antimikroba  terhadap Rastolnia solanacearum yang ditunjukkan dengan adanya zona bening dan 26 isolat mampu menekan pertumbuhan Fusarium oxysporum.
Kata Kunci: Antimikroba, patogenik, hemolisis, hipersensitif, kitinolitik

## PENDAHULUAN
Handeuleum  ( Graptophyllum  pictumL. Griff ) adalah jenis tanaman obat yang memiliki kandungan  senyawa  yang  bermanfaat  dan dimanfaatkan  sebagai  obat  tradisional  untuk
mengatasi  beberapa  penyakit  seperti  obat wasir,  darah  tinggi,  rematik,  diabetes,  batu ginjal,  dan  lain  –  lain  (Rosmala et  al .,  2015). BPOM  (2004)  menyatakan  bahwa  tanaman handeuleum  mengandung  alkohol,  pektin,  dan asam  formiat.  Kandungan  minyak  atsiri  tidak
e- ISSN: 2715-033X                                           JURNAL AGROPLASMA, Vol. 10 No. 1, Mei  2023: 320-328
kurang dari 0,4 % dan flavanoid 0,4 %, dengan bahan aktif penanda dari golongan triterpenoid, yakni vomifoliol. Kandungan fitokimia (saponin, tanin, alkaloid, dan triterpenoid) akan membantu  dalam  pemanfaatannya  sebagai tanaman obat. (Syamsuhidayat et al.,
1991)melaporkan  bahwa  kandungan  bahan aktif Grapthophyllum pictum dapat dimanfaatkan  untuk  mengatasi  penyakit  wasir, melancarkan buang air seni, melancarkan haid, dan rematik; menghaluskan kulit ( skin softener );  batu  empedu,  hepatitis,  usus  besar dan penyakit lainnya.
Penelitian terhadap
pemanfaatan tanaman  handeuleum  dalam  bidang  penyakit tanaman  belum  banyak  dilakukan,  khususnya mikroorganisme  endofit  yang  berasal  dari tanaman  ini.  Mengingat  bahwa  tanaman handeuleum  menghasilkan senyawa  –  senyawa metabolit  sekunder  yang  dapat  mencegah  atau mengurangi intensitas serangan patogen.
Mikroba  endofit  dapat  berasal  dari kelompok  bakteri  dan  cendawan.  Berbagai penelitian  telah  dilakukan  terhadap  peran mikroba  endofit,  khususnya  pada  bakteri endofit. Mikroba endofit hidup di dalamjaringan  tanaman  pada  periode  tertentu dan  mampu  hidup  dengan  membentuk  koloni dalam  jaringan  tanaman  tanpa  membahayakan inangnya  (Agusta,  2009).  Bakteri  endofit adalah  bakteri  non-patogen  yang  hidup  di dalam jaringan tanaman yang sehat (Suhandono  and  Utari,  2014).  Oleh  karena hidup  di  dalam  jaringan  tanaman,  bakteri endofit  relatif  terlindungi  dan  mendapatkan nutrisi  yang  memadai.  Peranan  bakteri  ini terhadap  tanaman  yaitu  menjaga  kesehatan tanaman (Malfanova, 2013).
Bakteri  endofit  memberi  keuntungan bagi  tanaman  melalui  produksi  siderophore, asam absisat, asam indol asetat (AIA), dan lain- lain  (Tian et  al., 2015).  Beberapa  penelitian telah  banyak  dilakukan  untuk  mengetahui keberadaan  mikroorganisme  endofit  pada berbagai tanaman yaitu tanaman padi  (Ji et al ., 2013),  kentang  (Pavlo et  al. ,  2011),  anggrek (Faria et  al. , 2013), kina  (Zakiyah et  al., 2015). Peran  bakteri  endofit  yang  sangat  penting  bagi tanaman  menjadikan  bakteri  ini  sebagai mikroorganisme yang potensial dalam meningkatkan  produktivitas  tanaman.  Oleh
karena  itu  penelitian  untuk  eksplorasi  dan isolasi bakteri endofit ini diperlukan. Eksplorasi  bakteri  endofit  dari  tanaman handeuleum ini diharapkan menemukan bakteri endofit yang potensial sebagai agens hayati dan pemacu pertumbuhan tanaman.
Pengetahuan  tentang  eksplorasi  dan pemanfaatan  bakteri  endofit  dari  tanaman handeuleum sangat dibutuhkan, potensi senyawa  yang  dihasilkan  dari  tanaman  ini dapat  dimanfaatkan  sebagai  bahan  dalam pencarian agens hayati dalam bidang pertanian.

## BAHAN DAN METODE

## Persiapan sampel tanaman
Sampel  tanaman  yang  digunakan  untuk diisolasi  adalah  tanaman  handeuleum  yang berasal dari Balai Penelitian Tanaman Obat dan Aromatik  (Balitro),  Cimanggu,  Jawa  Barat. Bagian  tanaman  yang  digunakan  adalah  akar, batang dan daun.

## Isolasi dan pemurnian
Isolasi  bakteri  endofit  dari  tanaman handeuleum  merujuk  pada  metode(Resti et  al., 2013)  yang  telah  dimodifikasi.  Setiap  bagian sampel  tanaman  dicuci  dengan  air  yang mengalir  dan  dikeringkan.  Setiap  sampel tanaman selanjutnya dilakukan sterilisasi permukaan, yaitu dengan menggunakan alkohol 70% selama 1 menit kemudian NaOCL selama  2  menit  dan  dibilas  sebanyak  tiga  kali dengan akuadest steril.
Sebanyak  1  gram  sampel  daun,  batang, dan akar masing –  masing dihancurkan dengan mortar sampai halus di dalam laminar air flow . Sebanyak 1 ml suspensi dicampurkan dengan 9 ml  akuades  steril  dan  divorteks,  kemudian dibuat seri pengenceran 10 -2 dan 10 -3 . Suspensi pengenceran  disebar  pada  media  TSA  20%, King’s  B  20%,  Pikovskaya  20%,  kemudian diinkubasi selama 48 jam.
Parameter  yang  diamati  adalah  total populasi  dengan  menghitung  koloni  dan  jenis bakteri (berdasarkan warna dan bentuk koloni). Setiap koloni bakteri yang memiliki bentuk dan warna  yang  berbeda,  dimurnikan  dengan menggunakan  tusuk  gigi  yang  steril  kemudian
e- ISSN: 2715-033X                                           JURNAL AGROPLASMA, Vol. 10 No. 1, Mei  2023: 320-328
digoreskan pada masing – masing media (TSA, King’s  B,  dan  Pikovskaya  100%)  dan  diberi kode  untuk  setiap  isolat  yang  dimurnikan. Isolat  yang  berhasil  dimurnikan  dilakukan  uji keamanan  hayati  yang  meliputi  uji  aktivitas hemolisis dan uji hipersensitif.

## Uji aktivitas hemolisis
Uji aktivitas hemolisis mengikuti metode  yang  dilakukan  oleh  (Zimbro,  2009). Pengujian  ini dilakukan dengan  menumbuhkan isolat  bakteri  pada  media  agar  darah  ( blood agar ),  kemudian  diinkubasi  selama  24  jam pada suhu ruang. Parameter pengamatan adalah zona  hemolisis,  yaitu  adanya  zona  bening  di sekitar  koloni  bakteri.  Jika  terbentuk  zona positif,  bakteri  merupakan  patogen  mamalia. Koloni  bakteri  yang  tidak  membentuk  zona positif digunakan untuk pengujian hipersensitif.

## Uji hipersensitif
Pengujian ini dilakukan untuk mengetahui patogenesitas  isolat bakteri endofit terhadap tanaman. Uji hipersensitif menggunakan  metode  yang  dilakukan  oleh (Wahyudi et  al., 2011).  Parameter  pengamatan adalah  adanya  gejala  nekrosis  pada  setiap  ruas daun  yang  diinjeksikan  suspensi  bakteri  yang telah diinkubasi selama 24 jam. Gejala nekrosis menunjukkan  isolat  bakteri  positif  yang memiliki potensi sebagai patogen pada tanaman.

## Uji gram
Pengujian ini merujuk
pada metode(Schaad et al., 2001). Uji gram dilakukan  dengan  menggunakan  KOH  3%. Indikator  pengamatan  dilakukan  terhadap terbentuk  tidaknya  lendir  dari  campuran  KOH 3%  dan  isolat  bakteri.  Jika  terbentuk  lendir menunjukkan  bakteri  tersebut  bersifat  gram negatif dan sebaliknya.

## Uji kitinolitik
Uji kitinolitik menggunakan pada metode  (Gohel et  al. ,  2006).  Media  uji  yang digunakan  adalah  media  kitin.  Koloni  bakteri
diambil  dengan  tusuk  gigi  steril  kemudian digoreskan  pada  media  kitin  padat  dan diinkubasikan pada suhu ruang selama 48  jam. Parameter  pengamatan  adalah  ada  tidaknya zona bening di sekitar koloni bakteri.

## Uji aktivitas pelarut fosfat
Pengujian merujuk pada metode (Sukmadewi et  al. ,  2017)  dengan  modifikasi. Uji  aktivitas  pelarut  fosfat  dilakukan  dengan menggunakan media Pikovskaya. Isolat bakteri dari biakan murni diambil dengan menggunakan  tusuk  gigi  steril,  kemudian digoreskan  pada  media  Pikovskaya  dan diinkubasikan pada suhu ruang selama 48  jam. Parameter  yang  diamati  adalah  ada  tidaknya zona bening di sekitar koloni bakteri.

## Uji antagonis
Uji antagonis dilakukan dengan menggunakan  metode  (Munif et  al. ,  2012). Bakteri  endofit  yang  terpilih  selanjutnya dilakukan  uji  antagonis  terhadap  patogen tanaman  dengan  metode dual  culture .  Patogen tanaman  yang  digunakan  adalah Fusarium oxysporum .  Parameter  pengamatan  adalah adanya daya hambat terhadap patogen tanaman oleh  bakteri  endofit  pada  hari  ke-7.  Daya hambat dihitung dengan menggunakan rumus :
Daya hambat = x 100%
Keterangan:
r1 = jari – jari miselium hingga tepi bakteri r2 = jari – jari miselium hingga tepi zona hambat

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Populasi bakteri endofit
Hasil  isolasi  bakteri  endofit  yang berasal  dari  tanaman  handeuleum,  didapatkan populasi yang berbeda pada kedua pengenceran yang  berbeda  dari  ketiga  bagian  sampel tanaman  yaitu  akar,  batang,  dan  daun.  Isolat bakteri  endofit  yang  diperoleh  yaitu  sebanyak 50 isolat yang telah dimurnikan.  Tabel 1 dapat dilihat  bahwa  pada  bagian  akar  tanaman handeuleum  populasi  bakteri  endofit  lebih
e- ISSN: 2715-033X                                           JURNAL AGROPLASMA, Vol. 10 No. 1, Mei  2023: 320-328
tinggi, populasi selanjutnya berada pada bagian batang,  dan  diikuti  dengan  bagian  daun. Menurut (Purwanto et al., 2014), bakteri endofit dapat  masuk  ke  dalam  jaringan  tanaman umumnya melalui akar, namun bagian tanaman
yang  terpapar  udara  langsung  seperti  bunga, batang,  daun  (melalui  stomata)  dan  kotiledon, juga  dapat  menjadi  jalur  masuk  bagi  bakteri endofit.
Tabel 1. Populasi bakteri endofit pada bagian akar, batang, dan daun
Populasi bakteri endofit (cfu) x 10 4 Bagian sampel tanaman 1 2 3 10 -2
10 -3 10 -2 10 -3
10 -2 10 -3 Akar 0.29 13.2 2.3 2.53 2.3 2.53 Batang 0.04 2.6 0.76 6.5 1.09 6.5 Daun 0.1 0.1 0.72 4 0.83 4.5

## Uji aktivitas hemolisis
Hasil  uji  hemolisis  diperoleh  sebanyak 8  isolat  yang  menunjukkan  zona  bening disekitar  koloni  pada  media blood  agar . Adanya  zona  bening  mengindikasikan  bahwa isolat  merupakan  bakteri  patogenik  pada mamalia dikarenakan terbentuknya α-hemolisin (hemolisis total).
Terbentuknya  zona  hemolisis  pada permukaan blood  agar disebabkan  oleh  isolat
bakteri  yang  diperoleh  menghasilkan  produk ekstraseluler yang memiliki kemampuan dalam melisis  sel  darah  merah  (Sukmadewi et  al. , 2017). Menurut (Skalka et al., 1979), jenis zona yang terbentuk pada media blood agar selain α- hemolisin,  yaitu  adanya  zona  berwarna  agak gelap  disekitar  koloni  (β-hemolisin)  dan  tidak terlihat  zona  disekitar  koloni  (γ-hemolisin), serta  kombinasi  antara  α-hemolisin  dan  β- hemolisin  akan  tampak  zona  terang  dan  gelap disekitar koloni.

## Uji hipersensitif
Hasil uji hipersensitif diperoleh sebanyak  42  suspensi  isolat  bakteri  endofit yang  diinjeksikan  pada  tanaman  tembakau, tidak  ada  suspensi  isolat  yang  menunjukkan gejala nekrotik pada tanaman tembakau setelah 24  jam  dan  48  jam  hari  setelah  infeksi.  Masa inkubasi  48  jam  menunjukkan  daun  hanya mengalami  layu  (Gambar  2 c,d ).  Hasil  ini menunjukkan  bahwa  semua isolat  yang diinfeksikan  pada  tanaman  tembakau  negatif atau tidak bersifat patogen pada tanaman.
Reaksi  hipersensitif  pada  tanaman adalah  sel  yang  mengalami  kematian  yang cepat  dan  terdapat  pada  satu  bagian  di  daun tanaman.  Reaksi  ini  muncul  ketika  patogen berinteraksi  dengan  tanaman  setelah  adanya pelukaan.  Reaksi  ini  juga  merupakan  tindakan tanaman  dalam  menghambat  pertumbuhan patogen. Reaksi hipersensitif umumnya dimiliki  oleh  bakteri  gram  negatif  patogen tanaman  yang  dipengaruhi  oleh  gen hrp dan diindikasikan dengan gejala nekrotik pada daun tanaman (Wahyudi et al., 2011).
Gambar 1. Uji hemolisis pada media blood agar

## KESIMPULAN (12pt)

## Uji gram
Hasil  pengujian  gram  terhadap  bakteri endofit  yang  berhasil  diisolasi,  terdapat sebanyak  17  isolat  bakteri  dengan  pewarnaan positif pada pengenceran 10 -2 . Sedangkan pada pengenceran 10 -3 , didapatkan sebanyak 7 isolat bakteri  yang  bersifat  gram  positif.  Hal  ini
ditunjukkan  dengan  tidak  terbentuknya  lendir saat  direaksikan  dengan  larutan  KOH  3  %. (Zubaidah et  al., 2009)menyatakan  bahwa  tidak terbentuknya  lendir  pada  gram  positif  karena dinding  sel  bakteri  gram  positif  lebih  resisten terhadap  KOH  sehingga  dinding  sel  tidak pecah,  kuatnya  dinding  sel  ini  yang  membuat DNA tetap berada di dalam sel.
Tabel 2. Uji gram pada isolat bakteri endofit
Bagian tanaman Media Pengenceran Kode isolat 10 -2 10 -3 Akar TSA A1 + A2 - A3 + A4 + Pikov A1 - A2 + + A3 + Kings B A2 - A3 + + Batang TSA B2 + B3 - B4 + B5 + Pikov B1 + B2 + B3 + Kings B B2 + B4 + B5 - Daun TSA D2 + D3 + Pikov D2 + + D3 +
Gambar 2. Reaksi hipersensitif pada daun tanaman tembakau setelah 24 jam (a,b) dan 48 jam (c,d) hasil pengamatan a) b) c)
d)
e- ISSN: 2715-033X                                           JURNAL AGROPLASMA, Vol. 10 No. 1, Mei  2023: 320-328
D4 + + Kings B D1 + D3 -

## Uji pelarut fosfat
Hasil  uji  pelarut  fosfat  didapatkan sebanyak  5  isolat  bakteri  endofit  yang menunjukkan  adanya  zona  yang  terbentuk disekitar  koloni  bakteri  (Gambar  3).  Adanya zona  bening  yang  terbentuk  disekitar  koloni
bakteri  mengindikasi  bahwa  bakteri  endofit mampu  melisis  fosfat.  Bakteri  yang  memiliki kemampuan  dalam  melarutkan  fosfat  dapat menyediakan  ketersediaan  fosfor  dalam  tanah yang  dibutuhkan  dalam  pertumbuhan  tanaman (Sonia and Setiawati, 2022).

## Uji kitinolitik
Hasil  dari  pengujian  kitinolitik  pada isolat  bakteri  endofit,  tidak  ditemukan  adanya isolat  yang  menunjukkan  zona  disekitar  koloni atau  negatif  (Gambar  4).  Isolat  bakteri  endofit menunjukkan  bahwa  bakteri  tidak  mampu mendegradasi kitin.
Bakteri  yang  mampu  mendegradasi kitin  adalah  kelompok  bakteri  kitinolitik  yang mengubah  kitin  menjadi  monomer  atau oligomer. Bakteri kitinolitik merupakan kelompok mikroba yang bernilai ekonomis dan banyak  dimanfaatkan  di  bidang  pertanian, kesehatan,  pengelolaan  limbah,  dan  teknologi pangan (Wahyuni et al., 2014).

## Uji antagonis
Uji  antagonis  yang  dilakukan  terhadap patogen  tanaman Ralstolnia  solanacearum
terlihat  bahwa  menghasilkan  zona  bening. Terbentuknya zona bening  menandakan  bahwa bakteri endofit yang diuji pada patogen tersebut bersifat antimikroba.
a) b) c)
Gambar 3. Isolat yang menunjukkan zona bening di sekitar koloni
a) b) c)
Gambar 4. Uji Kitinolitik pada Isolat Bakteri Endofit
e- ISSN: 2715-033X                                           JURNAL AGROPLASMA, Vol. 10 No. 1, Mei  2023: 320-328
Uji  antagonis  juga  dilakukan  terhadap cendawan  patogen  tanaman,  yaitu Fusarium oxysporum .  Terdapat  26  isolat  bakteri  endofit yang dapat menghambat pertumbuhan Fusarium  oxysporum yang  dilakukan  dengan metode dual  culture .  Isolat  yang  berasal  dari bagian  batang  daun  memiliki  daya  hambat
yang  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan  bagian daun  dan  akar  (Tabel  4).  Uji  antagonis  yang dilakukan  ini  menunjukkan  bahwa  isolat bakteri endofit yang berhasil diisolasi berpotensi sebagai antifungi dan dapat dimanfaatkan  sebagai  agens  hayati  terhadap patogen tumbuhan.
Tabel 3. Persentase daya hambat isolat bakteri endofit terhadap Fusarium oxysporum Asal isolat Kode isolat Daya hambat (%) Akar TSA A23 10,00 A24 - Pikov A21 - A22 47,50 A32 - Kings B A23 50,00 A32 15,00 A33 - Batang TSA B22 45,00 B24 - B25 32,50 B32 55,00 Pikov B22 - B23 47,50 B31 55,00 Kings B B22 -
a) b)
Gambar 5. Zona bening yang terbentuk disekitar  koloni a) Kode isolat D23, b) Kode isolat B25
Gambar 6.Beberapa isolat yang menunjukkan daya hambat terhadap Fusarium
B24 40,00 B25 - Daun TSA D22 55,00 D23 25,00 D34 - Pikov D22 37,50 D23 50,00 D31 - Kings B D22 32,50 D31 55,00

## KESIMPULAN
Hasil  penelitian  memperoleh  sebanyak 50  isolat  bakteri  endofit  dengan  beberapa karakteristik.  Hasil  isolasi  diperoleh  populasi isolat  bakteri  endofit  yang  tinggi  yaitu  pada bagian  akar,  sebanyak  8  isolat  yang  bersifat patogenik  pada  mamalia,  uji  hipersensitif menunjukkan  tidak  ada  isolat  yang  bersifat patogenik  pada  tanaman,  uji  gram  diperoleh sebanyak  24  isolat  yang  bersifat  gram  positif, sebanyak  5  isolat  mampu  melisis  fosfat,  tidak ada  isolat  yang  dapat  mendegradasi  kitin, sebanyak 2 isolat bersifat antimikroba terhadap Rastolnia  solanacearum yang  ditunjukkan dengan  adanya  zona  bening  dan  26  isolat mampu  menekan  pertumbuhan Fusarium oxysporum .

## DAFTAR PUSTAKA
Agusta,  A.  (2009) Biologi  dan  Kimia  Jamur Endofit .  Bandung:  Institut  Teknologi
Bandung.
Faria,  D.C. et  al. (2013)  ‘Endophytic  bacteria isolated  from  orchid  and  their  potential to  promote  plant  growth  Endophytic bacteria  isolated  from  orchid  and  their potential  to  promote  plant  growth’, (September).
Available at:
https://doi.org/10.1007/s11274-012-
1173-4.
Gohel,  V. et  al. (2006)  ‘Bioprospecting  and antifungal  potential  of  chitinolytic microorganisms’,  5(January),  pp.  54–
72.
Ji  Hye,  S.,  Gururani  Anand,  M.  and  Chun,  S.
(2013) ‘Isolation and characterization of plant  growth  promoting  endophytic diazotrophic  bacteria  from  Korean  rice cultivars Microbiological Research Isolation  and  characterization  of  plant growth promoting endophytic diazotrophic  bacteria  from  Korean  rice cultiv’, Microbiological Research , 169(1),  pp.  83–98.  Available  at: https://doi.org/10.1016/j.micres.2013.06 .003.
Malfanova,  N.V.  (2013) Endophytic  bacteria with  plant  growth  promoting  and biocontrol abilities . Leiden University.
Munif,  A.  and  Wiyono,  S.  (2012)  ‘Isolasi Bakteri  Endofit  Asal  Padi  Gogo  dan Potensinya  sebagai  Agens  Biokontrol dan  Pemacu  Pertumbuhan  Isolation  of Endophytic  Bacteria  from  Upland  Rice and  Its  Role  as  Biocontrol  Agents  and Plant Growth Inducer’, 8.
Pavlo,  A. et  al. (2011)  ‘Endophytic  bacteria enhancing growth and disease resistance of potato ( Solanum tuberosum  L  .)’, Biological  Control , 56(1), pp. 43–49. Available at: https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.201 0.09.014.
Purwanto, U.M.S., Pasaribu, F.H. and Bintang, M.  (2014)  ‘Isolasi  bakteri  endofit  dari tanaman sirih hijau ( Piper betle L .) dan potensinya  sebagai  penghasil  senyawa antibakteri’, 1(1), pp. 51–57.
Resti,  Z.,  Habazar,  T.  and  Putra,  D.P.  (2013) ‘Skrining  dan  identifikasi  isolat  bakteri endofit  untuk  mengendalikan  penyakit hawar  daun  bakteri  pada  bawang merah’, (2007).
e- ISSN: 2715-033X                                           JURNAL AGROPLASMA, Vol. 10 No. 1, Mei  2023: 320-328
Rosmala,  A.,  Khumaida,  N.  and  Sukma,  D.
(2015)  ‘Perubahan  Morfologi  dan Pertumbuhan Handeuleum (
Graptophyllum pictum L . Griff ) akibat
Iradiasi  Sinar  Gamma  Morphological
Changes  and  Growth  of  Handeuleum  ( Graptophyllum pictum L . Griff ) due to Gamma  Ray  Irradiation’,  43(3),  pp. 235–241.
Schaad,  N.W.,  Jones,  J.  and  W,  C.  (2001) Laboratory  Guide  for  Identification  of Plant  Pathogenic  Bacteria .  3rd  edn. American Phytopathological Society. St Paul, MN.
Skalka,  B.,  Smola,  J.  and  Pillich,  J.  (1979)  ‘A
simple method of detecting staphylococcal hemolysin’, Zbl.
Bakteriol. Hyg. I. Abt. Orig , 245(3), pp.
283–286. Sonia,  A.V.  and  Setiawati,  T.C.  (2022) ‘Aktivitas bakteri pelarut fosfat terhadap peningkatan ketersediaan
fosfat pada tanah masam The activity of phosphate  solubilizing  bacteria  on increasing  phosphate  available  in  acid soil’, 15(1), pp. 44–53.
Suhandono, S. and Utari, B.I. (2014) ‘Isolation
and Molecular Identification of Endophytic Bacteria from Durian
Isolation  and  Molecular  Identification of  Endophytic  Bacteria  from  the  Arils of Durian ( Durio zibethinus Murr .) var . Matahari’, Microbiology  Indonesia ,  8,
pp. 161–169. Available
at: https://doi.org/10.5454/mi.8.4.3. Sukmadewi,  D.K.T. et  al. (2017)  ‘Test  of Phytopathogenicity  ,  Hemolysis  and
Microbial Ability in Solubilizing
Phosphate  and  Potassium’,  19(2),  pp.
68–73.
Syamsuhidayat, Sri Sugati Hutapea, J.R. (1991)
Inventaris  Tanaman  Obat  Indonesia . Jakarta:  Departemen  Kesehatan  RI, Badan  Penelitian  dan  Pengembangan
Kesehatan. Tian,  B.,  Cao,  Y.  and  Zhang,  K.  (2015) ‘Metagenomic insights
into communities , functions of endophytes , and  their  associates  with  infection  by root-knot  nematode  ,  Meloidogyne incognita  ’, Nature  Publishing  Group ,
(October),  pp.  1–15.  Available  at: https://doi.org/10.1038/srep17087.
Wahyudi,  A.T.,  Meliah,  S.  and  Nawangsih, A.A.  (2011)  ‘Xanthomonas  oryzae  pv. oryzae  bakteri  penyebab  hawar  daun pada  padi:  Isolasi,  karakterisasi,  dan telaah  mutagenesis dengan transposon’,
15(1).
Wahyuni,  S.,  Kirami,  M.W.  and  Khaeruni,  A.
(2014)  ‘Karakterisasi  sifat  biokimia isolat  bakteri  kitinolitik  asal  tambal udang’, Biologi Eksperimen dan
Keanekaragaman  Hayati ,  2(2),  pp.  50– 55.
Zakiyah, A., Radiastuti, N. and Sumarlin, L.O.
(2015)  ‘Aktivitas  antibakteri  kapang endofit  dari  tanaman  kina  (Cinchona calisaya Wedd .)’, 8, pp. 51–58.
Zimbro,  M.J.  (2009) Difco  &  BBL  Manual: Manual  of  Microbiological  Culture Media . 2nd edn. Becton, Dickinson and
Company, Sparks, Md. Zubaidah, E., Saparianti, E. and Purwohadisantoso,  K.  (2009)  ‘Isolasi bakteri  asam  laktat  dari  sayur  kubis yang memiliki kemampuan penghambatan bakteri patogen (Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes,  Escherichia  coli,  dan Salmonella thypimurium)’, Jurnal Teknologi Pertanian , 10(1), pp. 19–27.