## ISOLASI BAKTERI DARI RENDAMAN AKAR BAMBU DAN RESPON PEMBERIANNYA TERHADAP PERTUMBUHAN DAN PRODUKSI TANAMAN
TERUNG UNGU ( Solanum melongena L.)
Hilwa Walida, Ahmad Akhyar Siregar dan Agung Prawanda Program Studi Agroteknologi Sekolah Tinggi Ilmu Pertanian Labuhanbatu Jln. SM. Raja No 126 A Aek Tapa Labuhanbatu Sumatera Utara
Email : hw2191@gmail.com

## ABSTRACT
Soil  microbes  contained  in  bamboo  roots  are  classified  as  Plant  Growth  Promoting Rhizobacteria (PGPR). PGPR is a soil microbe found in plant roots that can increase plant growth and protect certain pathogens. This aims of this study were to determine the diversity of  bacterial  isolates  from  bamboo  root  baths  and  the  growth  and  production  response  of purple eggplant plants (Solanum melongena L.) with the application of biological fertilizers from  bamboo  root  baths.  This  research  was  begun  with  making  biological  fertilizers  from bamboo  root  baths.  Furthermore,  the  biofertilizer  was  taken  sufficiently  to  analyze  the diversity  of  bacterial  isolates  in  the  laboratory.  Each  treatment  was  repeated  10  times,  so that  the  experimental  unit  was  observed  as  many  as  40  plant  samples.  This  study  was analyzed  descriptively  by  characterizing  isolates  and  calculating  the  mean  of  each parameter. Based on the results of bacterial isolation from bamboo root baths, 8 isolates of bacteria  were  found  with  different  macroscopic  morphological  characteristics  including  7 Gram-positive  bacterial  isolates  and  1  Gram-negative  bacterial  isolate  and  5  bacillary (stem)  isolates  and  3  (round)  coco  isolates.  The  highest  average  in  all  parameters  (plant height, number of leaves, leaf width and initial fruit weight) were in the M4 treatment (dose of 20 ml / plant).
Keywords: Bacteria, Bamboo Root Baths, Solanum melongena L.

## PENDAHULUAN

## 1.1  Latar Belakang
Terung  ungu  ( Solanum  melongena L. )  merupakan  tanaman  sayuran  yang dapat  tumbuh  di  daerah  tropik  maupun subtropik.  Terung  termasuk  salah  satu sayuran buah yang digemari oleh berbagai kalangan  karena  mengandung  kalsium, protein,  lemak,  karbohidrat,  vitamin  A, vitamin  B,  vitamin  C,  fosfor  dan  zat  besi (Soetasad, 2000).
Di  Indonesia, produksi terung rata- rata yaitu 32,64 – 34,11 kwintal/ha padahal untuk  luasan  1  hektar  dapat  dihasilkan  30 ton  terung  (Rukmana,  2006).  Berdasarkan
Badan  Pusat  Statistik  Kabupaten  Labuhan Batu  (2010),  luas  areal  tanaman  terung seluas  36/ha  dengan  produksi  37  ton, dengan hasil per hektar 10,28 kwintal.Melihat fakta tersebut dapat diambil kesimpulan bahwa terung merupakan sayuran yang cukup menjanjikan untuk diusahakan tetapi untuk saat  ini  produktivitas  terung  masih  sangat rendah.
Usaha  yang  dapat  dilakukan  untuk meningkatkan produktivitas tanaman terung  selain  dengan  usaha  ekstensifikasi,
diversifikasi  dan  rehabilitasi  juga  melalui usaha  intensifikasi  pertanian.  Salah  satu usaha  dalam  intensifikasi  tersebut  adalah pemupukan.
Dikemukakan
oleh
Prihmantoro  (1999),  bahwa  pemupukan bertujuan
untuk meningkatkan ketersediaan  unsur  hara  yang  dibutuhkan tanaman  agar  dapat  dicapai  produksi  dan kualitas hasil tanaman yang tinggi.
Para  petani  sering  menggunakan tanah perakaran (rhizosfer) bambu sebagai media  persemaian  yang  sudah  menjadi indigenous  knowledge .  Diduga  tanah rhizosfer  bambu  memiliki  peranan  dalam fenomena disease  suppressive  soil (tanah penekan penyakit). Mekanisme suppressive  soil dipengaruhi  oleh  faktor tidak  langsung  yaitu  kondisi  fisik  dan kimia  tanah  yang  meliputi:  tekstur,  pH, kandungan bahan organik, C-organik, serta faktor secara langsung dan paling berperan yaitu total populasi serta aktivitas mikroba tanah  (Hadiwiyono,  2010).  Mikroba  tanah yang  terkandung  pada  akar  bambu tergolong Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR).
PGPR  merupakan  mikroba  tanah yang  terdapat  pada  akar  tanaman  yang dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman dan perlindungan terhadap patogen tertentu  (Van  Loon,  2007).  PGPR  dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman, sebagai pemacu atau perangsang pertumbuhan (biostimulan) dengan mensintesis  dan  mengatur  konsentrasi berbagai zat pengatur tumbuh (fitohormon) seperti IAA, giberelin, sitokinin, dan etilen dalam  lingkungan  akar  (Yolanda et  al .,
2011).
Pengaruh langsung PGPR didasarkan atas
kemampuannya menyediakan dan memobilisasi atau memfasilitasi  penyerapan  berbagai  unsur hara  dalam  tanah  serta  mensintesis  dan
mengubah konsentrasi berbagai fitohormon  pemacu  tumbuh  sedangkan pengaruh  tidak  langsung  berkaitan  dengan kemampuan  PGPR  menekan  aktivitas patogen dengan cara menghasilkan senyawa  atau  metabolit  seperti  antibiotik dan  siderophore  (Kloepper,  1993;  Glick, 1995).
Mengingat pentingnya peranan PGPR serta informasi mengenai penggunaan  PGPR  sebagai  pupuk  hayati yang  ramah  lingkungan  di  Labuhanbatu masih terbatas, maka dilakukanlah penelitian  ini  agar  dapat  menjadi  literatur bagi  petani  bahwa  penggunaan  pupuk hayati juga dapat menjadi sebuah rekomendasi untuk membantu meningkatkan
pertumbuhan dan
produktivitas tanaman terung.

## 1.2.  Tujuan Penelitian
Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui keanekaragaman isolat bakteri dari  rendaman  akar  bambu  serta  respon pertumbuhan dan produksi tanaman terung ungu ( Solanum  melongena L.) dengan aplikasi  pupuk  hayati  dari  rendaman  akar bambu.

## 1.3  Kegunaan Penelitian
Penelitian  ini  berguna  sebagai bahan referensi bagi para petani khususnya tanaman terung ungu untuk dapat mencoba mengaplikasikan pupuk hayati dari rendaman  akar  bambu  sebagai  alternatif pengganti pupuk kimia.

## METODOLOGI PENELITIAN
2.1  Metode Penelitian Penelitian  ini  diawali  dengan membuat pupuk hayati dari rendaman akar bambu.  Selanjutnya  pupuk  hayati  tersebut diambil secukupnya untuk dianalisis keanekaragaman  isolat bakterinya  di laboratorium.  Adapun  satuan  percobaan pada penelitian ini adalah :
M0 = Dosis 0 ml/tanaman (kontrol) M1 =Dosis 5 ml/tanaman M2 = Dosis 10 ml/tanaman M3 = Dosis 20 ml/tanaman
Setiap perlakuan
dilakukan pengulangan  sebanyak  10  kali,  sehingga satuan  percobaan  yang  diamati  sebanyak
40 sampel tanaman. Penelitian ini dianalisis secara deskriptif dengan mengkarakterisasi  isolat  dan  menghitung rataan dari masing masing parameter.

## 2.2  Prosedur Penelitian

## 2.2.1  Sumber Isolat Bakteri
Sebanyak  100  gramakar  bambu direndam dalam toples dengan menggunakan  1  liter  air  yang  sudah dimasak  dan  ditunggu  selama  3  atau  4 hari,  lalu  rebu  sair  sebanyak  10  liter  dan dicampur  dengan  200  gram  terasi,  400 gram  gula  pasir,1kg  dedak  halus/bekatul dan  satu  sendok  kapur  sirih.  Setelah rebusan  mendidih  kemudian  didinginkan dan  masukkan  rendaman  akar  bambu sebanyak  satu  gelas  kecil,  selanjutnya rendaman tersebut difermentasikan selama  1  minggu  dan  setiap  2  hari  sekali fermentasi diaduk agar tidak mengendap.

## 2.2.2  Isolasi Bakteri dari AkarBambu
Sebanyak  1  ml  rendaman  akar bambu  disuspensikan  kedalam  akuades steril.  Setiap  1  ml  suspensi  ditambahkan ke 9 ml akuades steril untuk mendapatkan suspensi  dengan  tingkat  pengenceran 10-2. Pengenceran dilakukan dengan cara yang  sama  hingga  suspensi  tingkat10-4. Setelah  itu  0,1  ml  suspensi  diinkubasi pada  medium  NA  selama  24  jam  pada suhu 28 o C.

## 2.2.3  Karakterisasi Morfologi Isolat
Morfologi isolat bakteri keratinolitik  diamati  pada  kultur  isolat yang  telah  dimurnikan.  Pengamatan  yang dilakukan    meliputi  bentuk,    elevasi, tepian,  dan warna koloni.

## 2.2.4  Pengisian Polybag
Tanah  yang  digunakan  adalah tanah  topsoil.  Tanah  tersebut  harus dibersihkan  terlebih  dahulu  dari  sisa sampah  dan  sisa  akar  serta  bebatuan  dan setelah  itu  dilanjutkan  dengan  pengisian tanah kedalam polybag.

## 2.2.5  Penyemaian
Sebelum  biji  terung  ungu  disemai, rendam  terlebih  dahulu  biji  dengan menggunakan  air  hangat  selama  waktu  30 menit.  Penyemaian  biji  dilakukan  pada bedengan yang sudah digemburkan terlebih  dahulu  tanahnya  dan  setelah  itu tutupi  dengan  pelepah  sawit  atau  rumput kering  agar  terhindar  dari  sinar  terik matahari secara langsung.

## 2.2.6  Penanaman
Setelah  bibit  memiliki  4-5  helai daun  dan  berkisar  umur  22-26  hari, selanjutnya bibit siapdipindahkan  ke polibag untuk dilakukan penanaman.

## 2.2.7  Aplikasi Rendaman Akar Bambu
Pengaplikasian  konsorsium  bakteri dari  rendaman  akar  bambu  dilakukan dengan interval waktu pemberian2 minggu sekali  sesuai  dengan  dosis  yang  teah ditentukan.

## 2.2.8  Penyiraman dan Penyiangan
Penyiraman  dilakukan  pada  waktu pagi  dan  sore  hari  dengan  menggunakan gembor dan jika hujan penyiraman ditunda terlebih  dahulu  karena  keadaan  tanah masih lembab.
Penyiangan  dilakukan  2  minggu sekali.  Pada  tanaman  terung  yang  masih muda penyiangan dilakukan dengan menggunakan tangan dan cangkul kecil.
2.3  Parameter Yang Diukur 2.3.1  Tinggi Tanaman (cm)
Pengukuran parameter tinggi tanaman  dilakukan  dengan  menggunakan meteran  dalam  interval  waktu  1  minggu sekali hingga penelitian selesai.

## 2.3.2  Jumlah Daun (helai)
Penghitungan  jumlah  daun  (helai) dilakukandalam  interval  waktu  1  minggu sekali hingga penelitian selesai.

## 2.3.3  Lebar Daun (cm)
Pengukuran  lebar  daun  dilakukan menggunakan penggarisdalam interval waktu  1    minggu  sekali  hingga  penelitian selesai.
2.3.4  Berat Produksi Buah Awal (gr)
Buah  terung  yang  dijadikan  untuk sampel  awal  adalah  buah  terung  yang pertama  kali  yang  sudah  bisa  dipanen  dan sudah memenuhi kriteria cukup panen dan sudah  berumur  3  bulan  kemudian  buah ditimbang.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Pengamatan morfologi koloni dilakukan  setelah  mendapatkan  biakan murni.  Pengamatan  ini  meliputi  bentuk, tepian,  elevasi  dan  warna  koloni  bakteri (Hadioetomo,  1993).  Menurut  Hidayat et al .  (2006)  bahwa  bentuk  koloni  dari  suatu bakteri  dipengaruhi  oleh  umur  dan  syarat pertumbuhan  tertentu.  Variasi  bentuk bakteri yang murni. Terjadi juga dipengaruhi oleh lingkungan (faktor biotik dan  abiotik),  faktor  makanan  (medium tumbuh)  dan  suhu  (minimum,  optimum dan maksimum) (Ilyas, 2001).
Berdasarkan hasil isolasi bakteri dari  rendaman  akar  bambu  diperoleh  8 isolat  bakteri  dengan  karakteristik morfologi  makroskopis  yang  berbeda diantaranya  7  isolat  bakteri  bertipe Gram positif dan1 isolat bakteri bertipe Gram  negatif  serta  5  isolat  yang berbentuk  basil  (batang)  dan  3  isolat berbentuk  kokus  (bulat)  (Tabel  1).
Tabel 1. Karakteristik Morfologi Isolat Bakteri Rendaman Akar Bambu
Isolat Bakteri Karakterisasi Morfologi Koloni Sel Bakteri Bentuk Tepian Elevasi Warna Tipe Gram Bentuk B1 Tak Beraturan Berombak Datar Putih Susu + Basil B2 Bundar Licin Timbul  Putih Susu + Kokus B3 Bundar Licin Timbul Putih Susu + Basil B4 TepianMenyebar Bercabang Datar Putih Susu + Kokus B5 Tak Beraturan Tak Beraturan Datar Putih Susu + Basil B6 Tak Beraturan Berombak Timbul Putih Susu + Kokus B7 Berbenang- benang Berlekuk Seperti Kawah Putih Susu - Basil B8 Tak Beraturan Berombak Timbul Putih Susu + Basil Delapan  isolat  bakteri  yang disapatkan pada penelitian ini tergolong dalam kelompok
rizobakteri.
Rizobakteri  adalah  kelompok  bakteri rizosfer  yang  memiliki  kemampuan menduduki  rizosfer  secara  agresif  dan
rizobakteri  yang  memberi  keuntungan bagi  tanaman.  Rizobakteri  ini  dikenal dengan plant growth promoting rhizobacteria (Husen et al ., 2003).
PGPR dapat meningkatkan pertumbuhan  tanaman,  sebagai  pemacu
atau perangsang pertumbuhan
(biostimulan)  dengan  mensintesis  dan mengatur  konsentrasi  berbagai  zat pengatur  tumbuh  (fitohormon)  seperti IAA,  giberelin,  sitokinin,  dan  etilen dalam  lingkungan  akar  (Yolanda et  al ., 2011).
Berdasarkan hasil pengamatan yang telah  dilakukan  terhadap  tanaman  terung ungu  dengan  pemberian  konsorsium bakteri dari akar bambu (PGPR) terhadap parameter  yang  diamati  seperti  tinggi tanaman  (cm),  lebar  daun  (cm),  jumlah daun  (helai)  dan  berat  bobot  buah  segar (gr)  diketahui  bahwa  terdapat  perbedaan rataan  pada  masing-masing  dosis  yang diberikan.

## Tinggi Tanaman (cm)
Hasil  rataan  yang  ditunjukkan tanaman terung ungu setelah 14 MST dari parameter tinggi tanaman dengan menggunakan konsorsium bakteri dari akar bambu  dapat  diketahui  bahwa  nilai tertinggi  rataan  pada  perlakuan  M4  (20 ml/sampel)  sebesar  33,659  cm  dan  nilai terendah  pada  M3  (10  ml/sampel)  sebesar 29,999 cm (Tabel 2).
Tabel 2. Rataan Tinggi Tanaman Terung Ungu Perlakuan M1 M2 M3 M4 Jumlah 325,99  336,41  299,99  336,59 Rataan 32,599  33,641  29,999  33,659

## Jumlah Daun (helai)
Hasil  rataan  dari  jumlah  daun tanaman  terung  ungu  setelah  14  MST menunjukkan  nilai  tertinggi  pada  M4  (20 ml/sampel) sebesar 25,49helai dan nilaiterendah  pada  M0  (0  ml/sampel) sebesar 22,31 helai (Tabel 3).
Tabel 3. Rataan Jumlah Daun Terung
Ungu Ulangan Perlakuan
M1 M2 M3 M4 Jumlah 223,14  247,29 253,57 254,86 Rataan 22,31 24,73 25,36 25,49

## Lebar Daun (cm)
Hasil  rataan  dari  lebar  daun tanaman  terung  ungu  dapat  diketahui bahwa  nilai  rataan  lebar  daun  tertinggi yaitu  pada  M4(20  ml/sampel)  sebesar 13,16  cm  dan  terendah  pada  M1(0 ml/sampel) sebesar 12,95 cm (Tabel 4).
Tabel 4. Rataan Lebar Daun Terung Ungu
Perlakuan M1 M2 M3 M4 Jumlah 129,46  130,93  131,04  131,63 Rataan 12,95 13,09 13,10 13,16

## Berat Buah Awal Terung Ungu ( gr )
Dengan  adanya  hasil  rataan  dari berat  buah  awal  tanaman  terung  ungu dapat  diketahui  nilai  tertinggi  dan  nilai terendah  setelah  14  MST  yaitu  nilai tertinggi  pada  M4  (5  ml/sampel)  sebesar 188  grdan  nilai  terendah  pada  M3  (10 ml/sampel) sebesar 165 gr (Tabel 5).
Tabel 5. Rataan Bobot Buah Awal Terung Ungu
Perlakuan M1 M2 M3 M4 Jumlah 1.720 1.830 1.650 1.880 Rataan 172 183 165 188
Azzamy  (2015)  dan  Lindung  (2014)
menyatakan  bahwa  fungsi  PGPR  yaitu meningkatkan
penyerapan dan pemanfaatan  unsur  hara  N  oleh  tanaman. Unsur  hara  N  berguna  untuk  menambah tinggi  tanaman  dan  memacu  pertunasan (Jumin,  2010).  Hasil  ini  sesuai  dengan penelitian  Iswati  (2012),  bahwa  tinggi tanaman  tomat  tertinggi  dijumpai  pada perlakuan  pemberian  PGPR  12,5  ml/L. Iswati  (2012)  selanjutnya  menyatakan bahwa semakin tinggi konsentrasi pemberian  PGPR  maka  berbanding  lurus dengan pertumbuhan tanaman.
Styorini  (2010)  memanfaatkan  akar
bambu  yang  mengandung Pseudomonas flourenscens dan Bacillus  polymixa yang berperan  dalam  proses  fermentasi.  Selain itu Pseudomonas flourenscens dan Bacillus  polymixa dapat  mengeluarkan enzim  serta  hormon    yang  berguna  untuk memacu pertumbuhan tanaman dan mengeluarkan  antibiotik  yang  mampu menghambat pertumbuhan dan perkembangan  mikroba  yang  bersifat patogenik (Efendi, 2012).
Hasil penelitian yang dilakukan oleh Manuksela  (2004)  didapatkan  bahwa rhizobakteria  kelompok Bacillus  spp, Pseudomonas  Fluorescens dan Serratia spp, memiliki  kemampuan  memproduksi hormon  tumbuh  seperti  asam  indol  asetat (IAA)  yang  dapat  memacu  pertumbuhan tanaman. Thakuria et al. (2004) menyatakan  bahwa  inokulasi  isolat  PGPR jenis Bacillus sp.  Pada  bibit  padi  dapat meningkatkan  pertumbuhan  dan  produksi padi  hingga  43%,  sedangkan  inokulasi isolat PGPR jenis P. fluorescens meningkatkan produksi hingga 100%.
Peranan  PGPR  dalam  meningkatkan pertumbuhan dan produksi tanaman diduga ada  hubungannya  dengan  kemampuan mensintesis hormon tumbuh. Isolat Bacillus sp. dilaporkan mampu mensintesis asam indolasetat (IAA) (Thakuria et al ., 2004) sedangkan isolat P. fluorescens selain  menghasilkan  IAA (Thakuria et  al .,  2004;  Patten  &  Glick,
2002) juga menghasilkan sitokinin (Garcia deSalamone & Nelson, 2004).
Berdasarkan beberapa pendapat diatas dapat diketahui bahwa pertambahan tinggi  tanaman  diakibatkan  oleh  peran PGPR  yaitu  sebagai  biofertilizer  dan biostimulant  yang  dapat  menghasilkan unsur hara dan hormon-hormon
pertumbuhan untuk mendukung
pertumbuhan tanaman terung ungu.
Adanya interaksi yang saling menguntungkan
dengan cara pengembangbiakan  bakteri  yang  ada  pada akar  bambu  berdampak  pada  peningkatan pertumbuhan  pada  tanaman.  Semakin tersedianya  nutrien  bagi  bakteri  PGPR maka bakteri PGPR akan sukses mengkoloni bagian akar tanaman sehingga dapat  menguntungkan  bagi  pertumbuhan tanaman (Widyati, 2013).
Semakin  banyak  nitrogen  yang diserap  oleh  tanaman,  daun  akan  tumbuh lebih  besar  sehingga  proses  fotosintesis berjalan lancar dan biomassa total tanaman menjadi  lebih  banyak  (Sudartiningsih et al ., 2002). Tanaman yang cukup mendapat suplai N akan membentuk helai daun yang luas  dengan  kandungan  klorofil  yang tinggi, sehingga tanaman dapat menghasilkan  asimilat  dalam  jumlah cukup  menopang  pertumbuhan  vegetatif (Wijaya, 2008).
Kecenderungan  peningkatan  jumlah daun seiring dengan rataan tinggi tanaman pada parameter sebelumnya sesuai dengan pernyataan Hidajat (1994) bahwa pembentukan daun berkaitan dengan tinggi tanaman, dimana tinggi tanaman dipengaruhi oleh batang. Batang merupakan  tempat  melekatnya  daun-daun dan  disebut  buku,  batang  diantara  dua daun  disebut  ruas.  Semakin  tinggi  batang maka  buku  dan  ruas  semakin  banyak sehingga jumlah daun meningkat.
Prawanita et  al. (1981),  menyatakan bahwa  giberelin  berfungsi  dalam  memacu pertumbuhan  batang  dan  meningkatkan pertumbuhan  sel.  Pengaruh  dari  kegiatan fisiologis  tanaman  untuk  pertumbuhan tetap berjalan terutama terhadap tinggi dan jumlah daun, tetapi terhadap perpanjangan atau  penambahan  lebar  daun  yang  telah dewasa tidak akan terjadi lagi.
Azzamy  (2015)  menyatakan  bahwa hormon auksin berfungsi untuk mempertinggi persentase terbentuknya buah.  Sitokinin  dapat  menaikkan  tingkat mobilitas  unsur-unsur  dalam  tumbuhan sehingga proses fisiologis tanaman berjalan dengan lancar, sedangakan giberilin  berfungsi  untuk  perkembangan buah. Dengan tercukupinya hormon tersebut secara optimal maka pertumbuhan dan  perkembangan  tanaman  akan  berjalan dengan  baik  sehingga  pembentukan  biji akan  optimum  dan  seragam.  Anesta et  al.
(2016)  dalam  penelitiannya  menyatakan bahwa penambahan PGPR mampu meningkatkan bobot 1000 butir gabah padi dibandingkan dengan kontrol.
A’yun  (2013)  perendaman  PGPR selama  10  menit  mampu  meningkatkan jumlah  buah  pertanaman  dan  bobot  buah per tanaman. Pernyataan ini diperkuat oleh Isfahani & Besharati (2012) aplikasi PGPR bakteri Pseudomonas sp  dan Bacillus sp mampu  meningkatkan  komponen  hasil pada  mentimun.  Hasil  penelitian  Soesanto (2010)  bahwa  dengan  pengaplikasian PGPR pada tanaman tomat dapat meningkatkan bobot buah tomat pertanaman  yaitu  sebesar  51,44  gr,  hal  ini menunjukkan  bahwa  dengan  perlakuan PGPR  memberikan  pengaruh  terhadap bobot buah pada berbagai tanaman.

## KESIMPULAN
1. Didapatkan  8  isolat  bakteri  dari rendaman akar bambu.
2. Sebagian besar morfologi isolat koloni bakteri  berbentuk  tidak  beraturan, tepian  koloni  berbentuk  berombak, elevasi  isolat  berbentuk  timbul  dan semua isolat berwarna putih susu.
3. Terdapat 7 isolat bakteri bertipe Gram positif  dan  1  isolat  bakteri  yang bertipe  Gram  negatif,  dimana  5  isolat berbentuk  basil  (batang)  dan  3  isolat berbentuk kokus (bulat).
4. Rataan tertinggi pada semua parameter  (tinggi  tanaman,  jumlah daun, lebar daun dan berat buah awal) yaitu  pada  perlakuan  M4  (dosis  20 ml/tanaman).
5. Semakin  banyak  jumlah  PGPR  yang diberikan dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman yang diakibatkan semakin banyaknya mikroba  yang  dapat  menghasilkan unsur  hara  dan  hormon  tumbuhan sehingga  dapat  memacu  pertumbuhan tanaman.

## DAFTAR PUSTAKA
A’yun,  K.Q.  2013.  Pengaruh  Penggunaan
Plant Growth Promoting
Rizobakteria  Terhadap  Intensitas TMV  ( Tobacco  Mosaic  Virus ), Pertumbuhan,  Dan  Produksi  Pada Tanaman  Cabai  Rawit  ( Capsicum frutescens L.) JHPT 1(1):47-56. Anesta, D.O., I Dewa Nyoman Nyana dan Anak  Agung  Made  Astiningsih. 2016.  "Studi  Hasil  dan  Kualitas
Benih  Padi  P05  dengan  Pemberian
Pupuk Hayati ( Enterobacter cloacae )". E-Jurnal Agroekoteknologi  Tropika. 5(2). 116 –126.
Azzamy.  2015. Pengertian  dan  Fungsi PGPR  (Plant  Growth  Promoting Rhizobacteria) [Online].  Available at:  http://mitalom.com/pengertian- dan-fungsi-pgpr-plant-growth- promoting-rhizobacteria/ diakses pada tanggal 15 Mei 2018.
Azzamy.  2015.  Pengertian  dan  Fungsi PGPR  ( Plant  Growth  Promoting Rhizobacteria )http://mitalom.com/ pengertian-dan-fungsi-pgpr-plant- growth-promoting-rhizobacteria/ diakses pada tanggal 15 Mei 2018.
Badan Pusat Statistik Kabupaten Labuhanbatu.  2010. Labuhanbatu dalam  Angka  2009. Kabupaten Labuhanbatu.
Efendi,     M.H. 2012.     PGPR     ( Plant Growth  promoting  Rizobacteria ).
Humairafarm.blogspot.com/2012/1 0/pgpr-plant-growth-promoting rizobakteria.html. diakses pada tanggal 11 Juli 2018.
Garcia  de  Salamone,  I.E.,  Nelson,  L.M.
2004. Effects Of Cytokinin- Producing Pseudomonas PGPR
Strains On Tobacco Callus Growth. http://www.ag.auburn.edu/argentin a/pdfmanuscripts/garciadesalamone .pdfdiakses  pada  tanggal  15  Mei 2018.
Glick,  B.R.  1995.  The  Enhancement  Of Plant  Growth  By  Free-Living Bacteria. Canadian Journal Microbiology 41: 109-117. Hadioetomo,  R.S.  1993. Mikrobiologi
Dasar  Dalam  Praktek  Teknik  Dan Prosedur  Dasar  Laboratorium.
Penerbit Gramedia, Jakarta. Hadiwiyono.  2010.  Tanah  Supresif  Dalam Praktik Pengelolaan Penyakit Tumbuhan. J Ilmu Tanah
Agroklim . 7(1): 31-40.
Hidajat,  E.B  1994. Morfologi  Tumbuhan .
Departemen Pendidikan dan Kebudayaan Direktorat Jendral Pendidikan Tinggi Proyek Pendidikan Tenaga Kerja. Hidayat,  N.,  M.C.  Padaga,  S.  Suhartini. 2006. Mikrobiologi industri . Penerbit ANDI, Yogyakarta.
Husen,  E.,  Saraswati,  R.  2003.  Effect  Of IAA  –  Producing  bacteria  On  The Growth Of Hot pepper. J Mikrobiol Indones . 8: 22-26.
Ilyas, S. 2001. Mikrobiologi Dasar. Diklat Kompilasi.  Universitas  Sumatera Utara Press, Medan.
Isfahani,  F.,  Moshabaki,  Besharati,  H.
2012.  Effect  Of  Biofertilizer  On Yield  Components  Of  Cucumber .
Journal  of  Biology  and  Earth Sciences 2(2).
Iswati,  R.  2012.  Pengaruh  Dosis  Formula PGPR  Asal  Perakaran  Bambu Terhadap Pertumbuhan Tanaman Tomat ( Solanum Lycopersicum syn). Jurnal Agroteknotropika , 1(1).
Jumin, H.B. 2010. Dasar-dasar Agronomi . Jakarta: PT Raja Grafindo Persada.
Kloepper,  J.W.  1993. Plant  Growth Promoting Rhizobacteria as
Biologycal Control Agents. P. 255- 274.  In  Meeting  B.  (Ed.).  Soil Microbial Ecology. Applications in Agricultural  and  Environmental Management.  Marcel  Dekker,  Inc.
NewYork. Lindung.  2014.  Teknologi  Pembuatan  dan Aplikasi Bakteri Pemacu Pertumbuhan   Tanaman (PGPR) dan  Zat  Pengatur  Tumbuh  (ZPT) http://www.bppjambi.info/default.a sp?v=news&id=589  diakses  pada tanggal 15 Mei 2018.
Maunuksela,  L.  2004.  Molecular  And Physiological  Characterization  Of Bacteria  And  Frankia  In  Forest Soils  Devoid  Of  Actinorhizal Plants. Disertasi . Amsterdam (NED): Biocentri Wikki Universitatis Helsingiensis.
Patten,  C.L.,  Glick,  B.R.  2002.  Role  of Pseudomonas  putida indole  acetic acid  in  development  of  the  host plant  root  system. Appl.  Environ. Microbiol . 68 : 3795–3801.
Prawinata,  W.,  Haran,  S.,  Tjondronegoro,
P.  1981. Dasar-Dasar  Fisiologi Tumbuhan Botani IPB. Bogor. Prihmantoro, H. 1999. Memupuk Tanaman
Sayuran . Penebar Swadya, Jakarta. Rukmana. 2006. Bertanam Terung .
Penerbit Kanisius. Yogyakarta. Soesanto,  L.,  Magiastuti,  .,  Rahayuniati, R.F.  2010.  Kajian  Mekanisme Antagonis Pseudomonas flourescens P60 Terhadap Fusarium oxysporum F.Sp. Lycopersici  Pada  Tanaman  Tomat
In  Vivo. Jurnal  HPT  Tropika .10 (2) : 108-115.
Soetasad.  2000. Budidaya  Terung  Lokal dan Terung Jepang. Penebar Swadaya. Jakarta
Styorini.  2010. Konsep  Usaha  Tani Organik  PGPR  (Plant  Growth
Promoting Rizobacteria) . Surakarta: UNS.
Sudartiningsih,  D.,  Utami,  S.R.,  Prasetya, B.  2002.  Pengaruh  Pemberian Pupuk  Urea  dan  Pupuk  Organik Diperkaya  Terhadap  Ketersedian dan  Serapan  N  serta  Produksi Cabai  Besar (Capsicum  annum  L.) pada inceptisol Karangploso Malang. Agrivita 24(1): 63-69 . Thakuria,  D.,  Talukdar,  N.C.,  Goswami, C., Hazarika, S., Boro, R.C., Khan, M.R.  2004.  Characterization  and
Screening Of Bacteria From Rhizosphere  Of  Rice  grown  In
Acidic  Soils  Of  Assam. Current
Sci . 86:978-985. Van Loon, L.C. 2007. Plant Responses To Plant Growth Promoting
Rhizobacteria. Eur  J  Plant  Pathol .
119:243-254
Widyati,  E.  2013.  Dinamika  Komunitas
Mikroba di Rizosfir dan Konstribusinya Terhadap Pertumbuhan Tanaman Hutan. Tekno HutanTanaman 6 (2):55-64.
Wijaya,  K.A.  2008,  Nutrisi  Tanaman. J. Produksi Tumbuhan 1(3) : 1-28. Yolanda, E.M.G., Hernandez, D.J. Hernandez,  Esparza,  C.A.M.A.M.,
Cristales,  M.B.,  Ramirez,  L.F., Contreras,  R.D.M.,  Rojas,  J.M. 2011.  Growth  Response  of    Maize Plantlets Inoculated With Enterobacter spp.,  as  a  Model  for Alternative  Agriculture. Revista Argentina de Microbiologia .
Vol.4(3).287-29.