Journal of Aquaculture and Fish Health Vol. 9(1) - February 2020 DOI : 10.20473/jafh.v9i1. 15367

## Pengaruh Suplementasi Lactobacillus plantarum terhadap
Pertumbuhan dan Tingkat Kelangsungan Hidup Ikan Nila ( Oreochromis niloticus )
The effect of Lactobacillus plantarum supplementation on growth performances and survival rate of Nile tilapia ( Oreochromis niloticus )
Dara Puspita Anggraeni 1 , Muhamad Ali 2 , Ali Haris 1 dan Muhamad Amin 3*
1 Fakultas Perikanan, Universitas 45 Mataram, Mataram
2 Laboratorium Mikrobiologi dan Bioteknologi, Fakultas Peternakan, Universitas Mataram, Mataram
3 Departemen Manajemen Kesehatan Ikan dan Akuakultur, Fakultas Perikanan dan Kelautan, Universitas Airlangga, Surabaya

## Abstrak
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh penambahan  bakteri  penghasil  enzim  fitase  ( Lactobacillus plantrarum ) terhadap tingkat pertumbuhan dan kelangsungan hidup ikan nila. L. plantarum diberikan melalui penyemprotan pada  pakan  komersial  dengan  konsentrasi  berbeda;  0  log CFU/g sebagai kontrol (P1); 3,50 ± 0,24 log CFU/g (P2), dan 7,05  ±  0,11  log  CFU/g  (P3).  Ikan  nila  dipelihara  pada  bak plastik selama 45 hari dan diberi pakan komersial dengan dan campuran  probiotik  tersebut  di  atas.  Hasil  penelitian menunjukkan  bahwa  konsentrasi  probiotik  berpengaruh secara  signifikan  terhadap  tingkat  pertumbuhan  dan kelangsungan hidup ikan nila. Pertumbuhan terbaik diperoleh pada  konsentrasi  7,05  ±  0,11  log  CFU/g  (P3)  dengan  laju pertumbuhan  spesifik  3,04  %  BW/hari  (berat)  dan  2,89% BL/hari  (panjang).  Di  samping  itu,  ikan  yang  menerima suplementasi probiotik juga menunjukkan nilai rasio konversi pakan  yang  lebih  baik,  yakni  1,25±0,03,  dibandingkan dengan  kontrol (1,33 ±0,03).  Namun  tingkat kelangsungan hidup ikan nila yang diberi tambahan probiotik tidak berbeda nyata dengan kontrol (tanpa penambahan probiotik), ~91%. Hasil  ini  menunjukkan  bahwa  probiotik Lactobacillus plantrarum ini sangat direkomendasikan untuk dilakukan uji coba pada skala yang lebih besar.

## Abstract
This  research  aimed  at  studying  the  effect  of  probiotic supplementation  on  the  growth  performances  and  survival rate  of  Nile  tilapia  ( Oreochromis  niloticus ).  Probiotic ( Lactobacillus  plantarum )  previously  confirmed  to  produce phytase was sprayed onto commercial feed at a concentration of  0  log  CFU/g  as  the  control  (P1),  3.50  ±  0.24  log CFU/g (P2), and 7.05 ± 0.11 log CFU/g (P3). The diet was then fed to Nile  tilapia for  45  days.  The  result  showed  that  probiotic
*Correspondence : muhamad.amin@fpk.unair.ac.id
Received : 2019-09-20 Accepted : 2019-10-09
Kata Kunci : FCR, Lactobacillus plantarum, Ikan Nila, SGR, Survival Rate
Keywords : FCR, Lactobacillus plantrarum, Nile tilapia, SGR, Survival Rate
supplementation gave a better specific growth rate (SGR) in terms of both weight and length control, growth and survival rate  compared  to  control  (fish  without  probiotic supplementation). However, the best SGR was observed from those fish received probiotic in higher concentration, 3.04 % BW/day (weight) and 2.89% BL/day (length). Furthermore, fish received probiotic supplementation also had a better feed conversion  ratio  (FCR)  compared  to  those  fish  receiving  no probionts. Nevertheless, there was no significant difference in the survival rate of fish with probiotic or without probiotics, ~91%. The research suggests that L. plantarum is a potential probiotic for enhancing the growth performances and FCR of Nile tilapia.

## PENDAHULUAN
Ikan  nila  ( Oreochromis  niloticus ) merupakan komoditas unggulan budidaya air  tawar  di  beberapa  negara  Asia Tenggara  termasuk  Indonesia.  Spesies ikan  tersebut  banyak  dibudidayakan karena  beberapa  keunggulan  seperti: pertumbuhan yang relatif cepat, mudah di budidayakan,  dan  memiliki  toleransi lingkungan  yang  lebar  (Selim  and  Reda, 2015; Reda and Selim, 2015; Caipang et al .,  2015;  Amin,  2010).  Misalnya,  ikan nila  umumnya  dibudidaya  di  perairan tawar,  akan  tetapi  ikan  nila  juga  banyak dibudidayakan di air payau (Al-Harbi and Uddin, 2005) hingga  air  laut  (Luz et  al ., 2012).  Salah  satu  kendala  yang  masih dihadapi  para  pembudidaya  ikan  nila adalah  masih  tinginya  rasio  konversi pakan  karena  tingkat  kecernaan  pakan yang cukup rendah.
Akan  tetapi,  usaha  budidaya  ikan nila, masih memiliki beberapa kelemahan diantaranya  limbah  budidaya  dan tingginya  biaya  operasional  (Caipang et al .,  2015).  Tingginya  biaya  operasional salah  satunya  disebabkan  oleh  tingginya rasio konversi pakan yang berdampak juga pada meningkatnya limbah yang terbuang ke kolom perairan. Salah satu faktor yang menyebabkan  rendahnya  daya  cerna pakan  pada  komoditas  perikanan  adalah adanya  kandungan  senyawa  asam  fitat (Harland  and  Morris,  1995;  Cho  and Bureau,  2001;  Reddy et  al .,  1982;  Al- Asheh  and  Duvnjak,  1995).  Asam  fitat merupakan  senyawa  anti  nutrisi  yang pada pakan dengan bahan baku biji-bijian seperti kedelai (Kumar et al ., 2012; Cao et
al .,  2007).  Senyawa  tersebut  di  dalam saluran  pencernaan  ikan  cenderung mengikat  mineral-mineral  dan  asam amino hasil perombakan protein. Akibatnya,  daya  cerna  pakan  menjadi rendah,  dan  sebagian  nutrisi  dari  pakan akan terbuang bersama feses dan menjadi limbah  (Pallauf  and  Rimbach,  1997; Conrad et  al .,  1996).  Hal  ini  akan berdampak pada membengkaknya kebutuhan  pakan  dan  juga  biaya operasional budidaya. Pada beberapa penelitian
sebelumnya  melaporkan  bahwa  senyawa fitat  dapat  dipecah  oleh  enzim  yang disebut fitase (Liener, 1994; Sardar et al ., 2007; Cao et al ., 2008; Amin et al ., 2018). Enzim  tersebut  dapat  diproduksi  oleh beberapa  jenis  bakteri  yang  hidup  di saluran pencernaan. Oleh karena itu salah satu  teknologi  yang  dapat  digunakan untuk mengatasi masalah yang diakibatkan  oleh  senyawa  fitat  adalah suplementasi  bakteri  penghasil  enzim fitase  (Amin et  al .,  2018).  Beberapa penelitian juga telah membuktikan bahwa suplementasi  bakteri  penghasil  enzim fitase  meningkatkan  kecernaan  pakan, mengurangi  limbah  buangan  ke  perairan hingga meningkatkan pertumbuhan ikan. Lee et al . (2013) melakukan penambahan bakteri Lactobacillus  salivarius melalui pakan  dapat  meningkatkan  ketersediaan mineral fosfor dan kecernaan pakan pada ikan  lele  ( channel  catfish ).  Hasil  yang kurang lebih sama juga dilaporkan ketika suplementasi  bakteri  penghasil  enzim fitase  dapat  meningkatkan  kecernaan
pakan  dan  pertumbuhan  pada  ikan seabass , Dicentrarchus labrax (Oliva-Teles et  al .,  1998).  Namun  penelitian  tentang suplementasi bakteri penghasil fitase pada ikan masih jarang dilakukan.
Oleh  karenanya,  penelitian  ini bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh suplementasi  bakteri  penghasil  enzim fitase  ( Lactobacillus  plantarum )  terhadap pertumbuhan  dan  tingkat  kelangsungan hidup  ikan  nila.  Ikan  nila  berikan perlakuan  berupa  2  konsentrasi  bakteri yang berbeda (~1,0 x 10 9 CFU/g; P1, dan ~1,0 x 10 3 CFU/g; P2), dan satu kontrol dimana  ikan  diberikan  pakan  tanpa penambahan  bakteri  penghasil  enzim fitase. Output dari  penelitian  ini  dapat digunakan  sebagai  tambahan  informasi tentang  teknologi  yang  dapat  digunakan untuk  mengurangi  limbah  budidaya perairan dengan meningkatkan kecernaan pakan.

## METODOLOGI Waktu dan Tempat
Penelitian  ini  dilakukan  selama  45 hari pada bulan Juli hingga Agustus 2019 di  Desa  Lingsar  Kecamatan  Lingsar, Kabupaten  Lombok  Barat,  Provinsi  Nusa Tenggara Barat.

## Materi Penelitian
Penelitian ini menggunakan peralatan  diantaranya  9  bak  plastik dengan  volume  40  L,  botol  penyemprot, termometer,  pH  meter,  mesin  aerasi (Resun  LP40),  inkubator,  timbangan, spektrofotometer,  erlenmeyer,  selang aerasi, serok, sifon, heater , gelas ukur, DO meter,  kit  amonia  (SERA ammonia  test ), dan kit nitrit (SERA nitrite test ).

## Rancangan Penelitian
Rancangan penelitian menggunakan  rancangan  acak  lengkap (RAL) dengan 3 (tiga) perlakukan: P1: 0 log  CFU/g  kontrol,  P2:  3,50  ±  0,24  log CFU/g,  dan  P3:  7,05  ±  0,11  log  CFU/g dengan masing-masing perlakuan diberi 3 ulangan.
Gambar 1.  Nilai rata-rata angka lempeng total (ALT) pada pakan ikan yang disemprotkan probiotik. Bar adalah nilai standar deviasi.

## Prosedur Kerja
Persiapan diawali dengan pencucian wadah  budidaya  dan  peralatan  lainnya dengan menggunakan kaporit dan dibilas dengan  air  bersih.  Selanjutnya,  wadah disusun  secara  acak  untuk  mendapatkan susunan rancangan acak lengkap. Air yang sebelumnya  diambil  dari  kolam  ikan dimasukkan  ke  masing-masing  wadah plastik  sebanyak  28  l.  Aerator  dan perlengkapannya diatur agar media dalam
setiap stoples memperoleh suplai oksigen yang sama. Kultur bakteri probiotik ( Lactobacillus plantarum) dilakukan menurut  protokol  Amin  (2016)  dengan beberapa  modifikasi.  Probiotik  pertama kali diuji kemurniannya dengan menumbuhkannya  pada  media  spesifik untuk  bakteri  asam  laktat  yaitu de  Man Rogosa  Sharp Agar  (MRS)  cair.  Setelah diinkubasi pada suhu ruang selama 24 jam secara  aerobik,  bakteri  selanjutnya
dikultur  ada  media  MRS  agar  dan diinkubasi  selama  24-48  jam  pada  suhu ruangan secara aerob sampai mendapatkan single (satu)  isolat. Single isolat terebut kemudian dikultur kembali pada media MRS cair dengan volume 10 ml dan diinkubasi selama 48 jam sampai mendapatkan  OD  600nm;  0.4,  0,1  dan hanya  PBS  sebagai  kontrol  (Ali et  al ., 2018).
Pencampuran pakan dengan bakteri dilakukan menurut protokol yang
dikembangkan  oleh  Amin et  al .  (2017) dengan  sedikit  modifikasi.  Pakan  ikan komersial berupa pelet dipersiapkan satu kali  seminggu  dengan  menyemprotkan pakan  dengan  kultur  bakteri  (hasil  pada proses sebelumnya) dengan volume 30% v/b.  Kemudian,  pakan  tersebut  dikering anginkan  selama  10-15  menit.  Setelah kering,  pakan  dibungkus  pada  wadah plastik  steril  dan  disimpan  pada  suhu ruangan.
Ikan  nila  dengan  berat  rata-rata 1,15±  0,32g  yang  diperoleh  dari  balai benih  ikan  Batu  Kumbung,  Kec.  Lingsar, Kab. Lombok Barat dibawa menggunakan kantung  plastik  berisi  oksigen.  Sesampai di lokasi penelitian, benih ikan nila ditebar ke  dalam  wadah  budidaya  (bak  plastik) dengan  kepadatan  50  ekor/m 2 (SNI 7550:2009)  atau  sebanyak 15  ekor. Ikan tersebut  dipelihara  selama  1  minggu untuk proses adaptasi.
Pakan yang diberikan selama proses adaptasi  berupa  pelet  ikan  komersial dengan frekuensi pemberian 3 (tiga) kali sehari  (08.00;  12.00  dan  14.00  WITA) dengan feeding rate 5%. Sedangkan, pakan yang  diberikan  untuk  eksperimen  adalah pakan  yang  telah  disemprotkan  bakteri probiotik.
Penggantian  air  dilakukan  dengan cara  menyipon  ke  dasar  wadah  sampai mencapai  volume  20%  dari  air  di  dalam bak.  Kemudian  air  baru  dengan  jumlah
yang sama dimasukkan kembali ke wadah dengan cara pelan-pelan untuk menghindari  terjadinya  stres  pada  ikan. Penyiponan  tersebut  dilakukan  untuk membersihkan dasar wadah dari feses dan sisa  pakan  sehingga  kualitas  air  dapat dipertahankan.
Variabel yang diamati selama proses pemeliharaan diantaranya adalah kualitas air,  pertumbuhan,  tingkat  kelangsungan hidup,  dan feed  conversion  ratio (FCR). Pengukuran kualitas air dalam penelitian ini  meliputi  suhu  air,  derajat  keasaman (pH),  kadar  oksigen  terlarut  (DO)  dan amoniak.  Pengamatan  kualitas  air  ini  di lakukan  3  kali  seminggu,  yaitu  pagi  hari jam  07.00,  siang  hari  jam  13:00  dan malam hari jam 19.00.

## Analisis Data
Data  yang  diperoleh  pada  setiap perlakukan akan dibandingkan menggunakan  uji Analysis  of  Variance (ANOVA)  dengan  selang  kepercayaan 95% statistik. Nilai rata-rata yang berbeda di  antara  perlakukan  diuji  lanjut  dengan Tukey-test .

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Laju  pertumbuhan  spesifik  (SGR) dalam  bentuk  berat  pada  ikan  yang dipelihara  selama  45  hari  berbeda  nyata pada  setiap  perlakuan,  (F=8,65;  df  2,6; p=0,02). Pertumbuhan tertinggi diperoleh pada ikan nila yang diberi pakan probiotik dengan kepadatan tertinggi (P3: 7,5 log CFU/g) sebesar 3,04± 0,14%BW/hari, diikuti dengan ikan yang menerima probiotik dengan kepadatan 3,5 log  CFU/g  sebesar  2,89%BW/hari  dan terendah  pada  kontrol  tanpa  pemberian probiotik)  sebesar  2,60±0,16%BW/hari dapat dilihat pada Gambar 2.
Gambar 2.  Pertumbuhan  ikan  nila  yang  diberi  probiotik  pada  2  konsentrasi  dan  tanpa probiotik (kontrol). Bar adalah nilai standar deviasi dan superskrip yang berbeda menunjukkan bahwa nilai rata-rata berbeda secara nyata, p<0,05.
Laju  pertumbuhan  spesifik  panjang (SGR L ) ikan nila juga berbeda secara nyata antar perlakuan dan kontrol. Ikan dengan laju  pertumbuhan  terbaik  juga  diperoleh dari  ikan  yang  diberi  suplementasi probiotik tertinggi (P3) sebesar 1,02±0,19  %  BL/  hari,  diikuti  oleh  ikan nila  di  P1  sebesar  1,01±0,10  %BL/hari, dan  terendah  yakni  pada  ikan  kontrol, 0,83±0,08 %BL/hari (Gambar 3). Namun secara statistik laju pertumbuhan spesifik pada P2 dan P3 tidak berbeda nyata.
Gambar 3.  Laju pertumbuhan spesifik ikan nila dengan suplementasi probiotik dan tanpa suplementasi probiotik dalam bentuk panjang. Bar adalah nilai standar deviasi dan superskrip yang berbeda menunjukkan bahwa nilai rata-rata berbeda secara nyata, p<0,05. Hasil  ini  sama  dengan  hasil penelitian sebelumnya, dimana suplementasi probiotik dapat meningkatkan  laju  pertumbuhan  spesifik baik dalam bentuk berat maupun panjang pada  beberapa  jenis  organisme  akuatik (Amin et  al .,  2017;  Bandyopadhyay  and Das  Mohapatra,  2009;  Ridha  and  Azad,
2012).  Ridha and Azad (2012) melaporkan  bahwa  penggunaan  bakteri Lactobacillus sp. dan Bacillus amyloliquefaciens dapat  meningkatkan pertumbuhan, respons
imun dan
mengurangi  nila  rasio  konversi  pakan pada  ikan  nila.  Hal  ini  dapat  disebabkan oleh karena kemampuan bakteri probiotik untuk  memproduksi  enzim  pencernaan seperti  protease,  amilase  (Adeoye et  al ., 2016) atau bakteri penghasil enzim fitase, enzim  pemecah  asam  fitat  yang merupakan  salah  satu  anti  nutrisi  pada pakan ikan (Hu et al ., 2008; Amin et al .,
2018).
a a,b b 1,0 1,5 2,0 2,5 3,0 3,5 P1 (Kontrol) P2 (3 log CFU/g) P3 (7 log Cfu/g) SG R ( % BW /D A Y) PERLAKUAN a b b 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1,2 1,4 P1 (Kontrol) P2 (3 log CFU/g) P3 (7 log Cfu/g) SG R L (% BL/ H A R I) PERLAKUAN

## Tingkat Kelangsungan Hidup
Tingkat  kelangsungan  hidup  yang lazimnya  juga  disebut survival  rate (SR) merupakan  persentase  organisme  yang hidup  pada  akhir  pemeliharaan.  Hasil penelitian  menunjukkan  bahwa  tingkat kelangsungan hidup pada masing-masing perlakuan  secara  statistik  tidak  berbeda nyata, yakni 91% pada P3, 93 % pada P2 dan  91  %  pada  P1/kontrol  (Gambar  5).
Hasil  ini  tentunya  berbeda  dengan beberapa  penelitian  sebelumnya  yang menyebutkan bahwa suplementasi probiotik  dapat  meningkatkan  respons imun  pada  beberapa  jenis  organisme akuatik seperti ikan nila (Selim and Reda, 2015),  udang  (Newaj-Fyzul et  al .,  2014) maupun  organisme  akuatik  lainnya (Ghanbari et  al .,  2013;  Eslamloo et  al ., 2013).
Gambar 4.  Nilai  rata-rata  tingkat  kelangsungan  hidup  atau survival  rate ikan  nila.  Bar adalah nilai standar deviasi dan superskrip yang sama menunjukkan bahwa nilai rata-rata tidak berbeda secara nyata.
Feed Conversion Ratio (FCR) Feed  conversion  ratio atau  rasio konversi pakan didapatkan dari
pertambahan  berat  tubuh  ikan  selama pemeliharaan dengan jumlah pakan yang dihabiskan  selama  masa  pemeliharaan. Semakin  kecil  nilai  FCR  makan  semakin efisien ikan tersebut dalam memanfaatkan pakan untuk pertumbuhan. Hasil penelitian ini didapatkan bahwa nilai FCR
ikan pada setiap perlakuan berbeda secara nyata  (F=7,70;  df  2,6;  p=0,02).  FCR terendah  didapatkan  dari  ikan  dengan probiotik  tertinggi  (P3)  diikuti  dengan ikan  yang  diberikan  probiotik  sedang (P2), dan ikan tanpa perlakuan probiotik (P1/Kontrol). FCR pada ikan nila dengan perlakuan P3 adalah 1,25, ikan dengan P2 1.27,  dan  pada  ikan  tanpa  perlakuan probiotik (P1) adalah 1,35 (Gambar 5).
Gambar 5.  Nilai rata-rata rasio konversi pakan ikan nila yang diberi suplementasi probiotik. Bar adalah nilai standar deviasi dan superskrip (a,b) menunjukkan bahwa nilai rata-rata berbeda secara nyata.
a a a 0 20 40 60 80 100 120 P1 (Kontrol) P2 (3 log CFU/g) P3 (7 log Cfu/g) Sur vi val R at e (% ) Perlakuan b a,b a 0,5 0,7 0,9 1,1 1,3 1,5 P1 (Kontrol) P2 (3 log CFU/g) P3 (7 log Cfu/g) Feed conver si on rat io
(F C R ) Perlakuan
Nilai  rasio  konversi  pakan  yang terendah pada perlakukan P3
menunjukkan  bahwa  probiotik  yang diberikan  dapat  memberikan  kontribusi pada  proses  pencernaan  pakan.  Bakteri probiotik yang  digunakan  ( L.  plantarum ) mampu  memproduksi  enzim  fitase  pada pakan, sehingga jumlah nutrisi yang dapat diserap  oleh  ikan  menjadi  meningkat. Mekanisme  ini  telah  dijelaskan  pada beberapa  penelitian  sebelumnya  seperti yang  dilakukan  oleh  Lee et  al .  (2013), dimana
suplementasi Lactobacillus salivarius penghasil  enzim  fitase  dapat meningkatkan  kecernaan  dan  absorpsi nutrisi  pada  pakan.  Selain  itu  Roy et  al .
(2009) juga menyatakan bahwa penggunaan bakteri penghasil fitase dapat membantu  proses  pencernaan  pakan dengan  memecah  senyawa  anti  nutrisi
pada pakan. Oleh karenanya, mekanisme yang  sama  juga  dapat  menjelaskan meningkatnya  laju  pertumbuhan  spesifik dan  nilai  FCR  yang  lebih  baik  pada penelitian ini.

## Parameter  fisika  dan  kimia  air budidaya
Secara  umum  nilai  rata-rata parameter  fisika  dan  kimia  dari  air budidaya  pada  penelitian  seperti  suhu, pH, DO ( Dissolved oxygen ), dan amonia ini ditampilkan  pada  Tabel  1.  Nilai  semua parameter  kualitas  air  selama  proses pemeliharaan  ikan  nila  menunjukkan angka  yang  normal,  masih  berada  pada kisaran  angka  yang  baik  bagi  kehidupan benih  ikan  nila  (Amin  2010;  Nugroho, 2013; Azhari and Tomarosa, 2018).
Tabel 1.   Nilai rata-rata pH, DO, amonia, dan suhu pada air budidaya. Parameter Uji P1 (Kontrol) P2 (3.50 ± 0.24 log CFU/g) P3 (7.05 ± 0.11 log CFU/g) pH 7.17±0.15 7.20±0.25 7.13±0.23 DO (mg/l) 5.40±0.44 5.30±0.06 5.43±0.50 Amoniak (mg/l) 0.33±0.14 0.30±0.14 0.42±0.14 Suhu ( o C) 28.50±0.56 28.60±0.85 28.47±0.70
Nilai  rata-rata  suhu  air  budidaya (28 o C) selama proses pemeliharaan masih berada  pada  kisaran  optimal  untuk pertumbuhan ikan nila, yaitu 28°C - 32°C (Amin, 2010). Kisaran suhu yang hampir sama juga disebutkan oleh Sylvia and Infa (2010),  dimana  kisaran  suhu  yang  baik untuk  pertumbuhan  ikan  nila  adalah antara  25°C  sampai  30°C.  Kisaran  pH selama  penelitian  adalah  7  keasaman (pH) dan juga masih berada pada kisaran yang  optimal  untuk  pertumbuhan  ikan nila yaitu 6,5 –  9 (Azhari and Tomasoa, 2018). Sedangkan kisaran oksigen terlarut selama  penelitian  adalah  ~5  mg/l,  juga masih  berada  pada  kisaran  yang  optimal untuk  pertumbuhan  dan  perkembangan ikan  nila,  yakni  >3.0  mg/l  (Nugroho, 2013).  Demikian  halnya  dengan  nilai amoniak yang dapat dipertahankan selalu di  bawah  1  mg/l,  selama  penelitian
berlangsung.  Hasil  pengujian  kualitas  air selama pemeliharaan ikan nila menunjukkan bahwa ikan nila hidup pada kondisi yang sangat baik.

## KESIMPULAN
Hasil penelitian menunjukkan bahwa  suplementasi  probiotik  dengan tingkat  kepadatan  berbeda  memberikan pengaruh yang nyata terhadap pertumbuhan  dan  rasio  konversi  pakan pada  ikan  nila.  Pertumbuhan  terbaik diperoleh  pada  ikan  nila  yang  diberikan probiotik  pada  konsentrasi  tertinggi  (~7 log  CFU/mg)  diikuti  dengan  ikan  yang menerika  probiotik  dengan  konsentrasi sedang  (~3  log  CFU/g)  dan  terendah pada kontrol (tanpa suplementasi probiotik).  Namun,  hasil  ini  juga menunjukkan bahwa suplementasi
probiotik  tidak  memberikan  pengaruh yang nyata terhadap tingkat kelangsungan hidup  ikan  nila,  ~91%.  Hasil  ini menunjukkan bahwa penggunaan probiotik sangat efektif untuk
meningkatkan laju pertumbuhan dan rasio konversi pakan ikan nila.

## DAFTAR PUSTAKA
Adeoye, A.A., Yomla, R., Jaramillo-Torres, A., Rodiles, A., Merrifield, D.L. and Davies, S.J., 2016. Combined effects of exogenous enzymes and probiotic on  Nile  tilapia  ( Oreochromis niloticus ) growth, intestinal morphology and microbiome.
Aquaculture, 463 , 61-70.
Al-Asheh,  S.  and  Duvnjak,  Z.,  1995.  The effect of phosphate concentration on phytase production and the reduction  of  phytic  acid  content  in canola meal by A spergillus carbonarius during  a  solid-state fermentation process. Applied microbiology  and  biotechnology, 43 , 25-30.
Al-Harbi,  A.H.  and  Uddin,  N.,  2005.
Bacterial diversity of tilapia
( Oreochromis  niloticus )  cultured  in brackish  water  in  Saudi  Arabia. Aquaculture, 250, 566-572.
Ali, M., Karni, I., Amin, M. and Ichsan, M., 2018. Development of growth media for Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum:  a  poultry  probiotics candidate, Journal  of  Applied Biological  Sciences  (JABS), 12(1), pp.46-50.
Amin,  M.,  2010. Bacterial  variation  in gastrointestinal  tract  of  nile  tilapia, Orechromis  niloticus,  reared  in recirculating aquaculture system and active  suspension  tank. M.Sc, Wageningen  Institute  of  Animal Science (WIAS) Wageningen University.
Amin,  M.,  2016.  Screening  of  Cellulose-
Degrading Bacteria Associated with Gastrointestinal  Tract  of  Hybrid Abalone  as  Probiotic  Candidates.
International Journal of Aquaculture, 6.
Amin,  M.,  2018.  Marine  protease- producing  bacterium  and  its potential  use  as  an  abalone probiont. Aquaculture  Reports, 12, 30-35.
Amin, M., Bolch, C.J.S., Adams, M.B. and Burke,  C.M.,  2017.  Isolation  of alginate  lyase-producing  bacteria and  screening  for  their  potential characteristics as abalone probionts. Aquaculture  Research, 48,  5614- 5623.
Amin,  M.,  Lilianti,  M.A.,  Juwaidin,  J., Husnawati,  H.  and  Hasnah,  H., 2018.  Deteksi  dan  quantifikasi bakteri  penghasil  enzim  fitase  di saluran  pencernaan  ikan  nila ( Oreochromis niloticus ). Jurnal Perikanan Unram, 8, 1-5. Azhari,  D.  and  Tomasoa,  A.M.,  2018. Kajian Kualitas Air dan Pertumbuhan Ikan Nila (Oreochromis niloticus) yang Dibudidayakan dengan Sistem Akuaponik. Jurnal Akuatika Indonesia, 3, 84-90.
Bandyopadhyay,  P.  and  Das  Mohapatra, P.K.,  2009.  Effect  of  a  probiotic bacterium Bacillus  circulans PB7  in the  formulated  diets:  on  growth, nutritional quality and immunity of Catla  catla (Ham.). Fish  Physiol Biochem, 35, 467-78. Caipang, C.M., Choo, H.X., Bai, Z., Huang, H.  and  Lay-Yag,  C.M.,  2015. Viability  of  sweet  potato  flour  as carbon source for the production of biofloc  in  freshwater  culture  of tilapia,
Oreochromis
sp.
International  Aquatic  Research, 7,
329-336.
Cao,  L.,  Wang,  W.,  Yang,  C.,  Yang,  Y., Diana,  J.,  Yakupitiyage,  A.,  Luo, Z. and  Li,  D.,  2007.  Application  of microbial  phytase  in  fish  feed. Enzyme  and  Microbial  Technology,
40, 497-507.
Cao, L., Yang, Y., Wang, W., Yakupitiyage, A.,  Yuan,  D.  and  Diana,  J.,  2008. Effects  of  pretreatment  with
microbial  phytase  on  phosphorous utilization and growth performance of Nile tilapia ( Oreochromis niloticus ). Aquaculture Nutrition, 14, 99-109.
Cho, C. and Bureau, D., 2001. A review of diet  formulation  strategies  and feeding systems to reduce excretory and  feed  wastes  in  aquaculture. Aquaculture research, 32, 349-360. Conrad,  B.,  Savchenko,  R.S.,  Breves,  R. and  Hofemeister,  J.,  1996.  A  T7 promoter-specific, inducible protein expression system forBacillus subtilis. Molecular  and  General Genetics MGG, 250, 230-236.
Eslamloo,  K.,  Akhavan,  S.R.  and  Henry,
M.A.,  2013.  Effects  of  Dietary Administration of Bacillus Probiotics on  the  Non-Specific  Immune Responses of Tinfoil Barb, Barbonymus Schwanenfeldii (Actinopterygii: Cypriniformes: Cyprinidae). Acta  Ichthyologica  Et Piscatoria, 43, 211-218.
Ghanbari,  M.,  Jami,  M.,  Kneifel,  W.  and
Domig,  K.J.,  2013.  Antimicrobial activity and partial characterization of bacteriocins produced by lactobacilli  isolated  from  Sturgeon fish. Food Control, 32, 379-385.
Harland,  B.F.  and  Morris,  E.R.,  1995.
Phytate:  a  good  or  a  bad  food component? Nutrition Research, 15,
733-754.
Hu,  Y.,  Tan,  B.P.,  Mai,  K.S.,  Ai,  Q.H., Zheng, S.X. and Cheng, K.M., 2008. Effects  of  dietary  probiotic  on growth,  immunity  and  intestinal bacteria  of  juvenile Litopenaeus vannamei . Journal of Fishery Sciences of China/Zhongguo Shuichan Kexue,
15, 244-251.
Kumar,  V.,  Sinha,  A.,  Makkar,  H.,  De
Boeck,  G.  and  Becker,  K.,  2012.
Phytate  and  phytase  in  fish nutrition. Journal of animal physiology and animal nutrition, 96,
335-364. Lee, N.K., Lee, E.K. and Paik, H.D., 2013. Potential  probiotic  properties  of phytase-producing Lactobacillus
salivarius FC113. Annals of Microbiology, 63, 555-560. Liener,  I.E.,  1994.  Implications  of antinutritional components in
soybean  foods. Critical  Reviews  in Food Science & Nutrition, 34, 31-67. Luz, R.K., Melillo Filho, R., Santos, A.E.H.,
Rodrigues, L.A., Takata, R., Alvarenga,  É.R.d.  and  Turra,  E.M., 2012.  Stocking  density  in  the larviculture  of  Nile  tilapia  in  saline water. Revista Brasileira de Zootecnia, 41, 2385-2389. Newaj-Fyzul,  A.,  Al-Harbi,  A.  H.  and Austin, B., 2014. Review: Developments  in  the  use  of probiotics  for  disease  control  in aquaculture. Aquaculture, 431, 1-11. Nugroho A., Endang A., and Tita E., 2013.
Pengaruh  Kepadatan  Yang  Berbeda Terhadap Kelulushidupan Dan Pertumbuhan Ikan Nila ( Oreochromis niloticus ) Pada Sistem Resirkulasi  Dengan  Filter  Arang. Journal Of Aquaculture Management And Technology
Volume  2,  Nomor  3,  Tahun  2013, Halaman 94 – 100,
Oliva-Teles, A., Pereira, J. P., Gouveia, A. and Gomes, E., 1998. Utilisation of diets  supplemented  with  microbial phytase  by  seabass  ( Dicentrarchus labrax )  juveniles. Aquatic  Living Resources, 11, 255-259. Pallauf,  J.  and  Rimbach,  G.,  1997. Nutritional  significance  of  phytic acid and phytase. Archives of Animal Nutrition, 50, 301-319.
Reda,  R.M.  and  Selim,  K.M.,  2015.
Evaluation of Bacillus amyloliquefaciens on  the  growth performance, intestinal morphology,  hematology  and  body composition of Nile tilapia, Oreochromis  niloticus . Aquaculture International, 23, 203-217. Reddy,  N.,  Sathe,  S.  and  Salunkhe,  D., 1982.  Phytates  in  legumes  and cereals. Advances  in  food  research,
28, 1-92.
Ridha,  M.T.  and  Azad,  I.S.,  2012. Preliminary  evaluation  of  growth
performance  and  immune  response of Nile tilapia Oreochromis niloticus
supplemented  with  two  putative probiotic bacteria. Aquaculture Research, 43, 843-852. Roy, T., Mondal, S. and Ray, A.K., 2009. Phytase-producing  bacteria  in  the digestive  tracts  of  some  freshwater fish. Aquaculture Research, 40, 344- 353. Sardar,  P.,  Randhawa,  H.,  Abid,  M.  and
Prabhakar,  S.,  2007.  Effect  of dietary microbial phytase supplementation on growth performance,  nutrient  utilization, body  compositions  and  haemato - biochemical  profiles  of Cyprinus carpio (L.) fingerlings fed soyprotein - based  diet. Aquaculture Nutrition, 13, 444-456. Selim,  K.M.  and  Reda,  R.M.,  2015. Improvement  of  immunity  and disease resistance in the Nile tilapia,
Oreochromis  niloticus, by  dietary supplementation with Bacillus amyloliquefaciens. Fish  &  Shellfish
Immunology, 44, 496-503.
Sylvia,  M.S.  and  Infa,  M.,  2010.  Kualitas
Air Yang Mempengaruhi Pertumbuhan Ikan Nila (Oreochromis  sp.)  Di  Kolam  Beton Dan  Terpal. Journal  Of  Tropical Fisheries, Fakultas Perikanan Universitas Kristen Palangka Raya .