1
Pengaruh  Pemberian  Bakteri  Hetrotrof  Terhadap  Kualitas  Air  pada Budidaya Lele Dumbo (clarias sp. ) Tanpa Pergantian Air
Effect  of  Heterotropic  Bacteria  Application  on  Water  Quality  of  African  Catfish  ( Clarias sp.) Aquaculture Without Water Circulation Method
Dwi Ernawati 1* , Prayogo 2 , dan Boedi Setya Rahardja 2 1 Program Studi Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Kelautan, Universitas Airlangga, Surabaya
2 Departemen  Manajemen  Kesehatan  Ikan  dan  Budidaya  Perairan,  Fakultas  Perikanan  dan  Kelautan,  Universitas Airlangga, Surabaya * dwi-e--fpk10.web.unair.ac.id

## Abstrak
Ikan  lele  dumbo  ( Clarias sp.)  sebagai  komoditas  air  tawar  memiliki  permintaan yang  tinggi.  Salah satu cara  untuk  memenuhi  kebutuhan  permintaan  lele  dumbo  adalah  perbaikan  kualitas  air  sehingga produktifitas  ikan  semakin  meningkat.  Tujuan  penelitian  guna  mengetahui  pengaruh  dari  pemberian probiotik  yang  mengandung  bakteri  heterotrof  berbeda  pada  perairan  dan  pengaruhnya  terhadap  kadar ammonia    dan  kadar  nitrit  pada  media  budidaya  lele  dumbo.  Penelitian  ini  menggunakan  metode eksperimental Rancangan Acak Lengkap (RAL). Ikan lele dumbo dipelihara selama 30 hari dengan empat perlakuan dan empat ulangan yaitu P1 (kontrol), P2 (probiotik A), P3 (probiotik B), dan P4 (probiotik C). Datahasil  penelitian  diolah  menggunakan Analysis  of  Variance dan  dilanjutkan  Uji  Berjarak  Duncan karena  didapatkan  hasil  yang  berbeda  nyata.  Hasil  dari  penelitian  menunjukkan  bahwa  pemberian probiotik yang mengandung bakteri heterotrof pada perairan  mampu menekan produksi amonia dan nitrit yang berbeda nyata (p<0,05). Produksi kadar ammonia terendah adalah P4 sebesar 0,2093 ± 0,01483, dan tertinggi  pada  P1  sebesar  0,2641 ± 0,01357.  Produksi  kadar  nitrit  terendah  pada  P4  sebesar  0,0509  ± 0 , 00644, dan tertinggi pada P1 sebesar 0, 0988 ± 0,00404.
Kata kunci: bakteri heterotrof, amonia, nitrit, kualitas air

## Abstract
A  freshwater  commodity  such  as  the  African  catfish  ( Clarias sp.)  has  the  high  demand.  One  way  to complete demand is to make the good water quality to get the high productivity. The aims of this research are  known  about  the  effect  of  different  probiotic  used  which  contain  by  heterotrophic  bacteria  against ammonia  and  nitrite  production  in  the  media.  The  research  using  experimental  method,  with  the Completely  Randomized  Design  (CRD).  The  African  catfish  kept  in  30  days  with  four  treatments  and four  replications,  that  is  P1  (control),  P2  (probiotic  A),  P3  (probiotic  B),  and  P4  (probiotic  C).  The obtained  data  were  processed  by  Analysis  of  Variance  (ANOVA)  and  followed  by  Duncan  Multiple Range Test because there was significant data. The result showed that the different probiotic used which contain  by  heterotrophic  bacteria  in  the  media  giving  the  significant  effect  to  ammonia  and  nitrite concentration.  The  lowest  production  of  ammonia  concentration  in  the  media  showed  by  P4  0.2093  ± 0.01483  and  the  highest  production  of  ammonia  concentration  in  the  media  showed  by  P1 0.2641±0.01357.  The  lowest  production  of  nitrite  concentration  in  the  media  showed  by  P4  0.0509± 0.00644, and the highest production of nitrite concentration in the media showed by P1 0.0988±0.00404
Keywords: heterotrophic bacteria, amonia, nitrite, water quality
2

## Pendahuluan
Ikan lele merupakan satu dari banyak spesies  ikan  air  tawar  yang    dibudidayakan di  Indonesia.  Ikan  lele  dapat  dikembangkan ke semua daerah sebagai penyediaan protein hewani  serta  peningkatan  pen-dapatan masyarakat.  Produksi  ikan  lele  di  Indonesia pada rentang waktu antara tahun 2005- 2009 menunjukkan  peningkatan  produksi    rata- rata sebesar 31,55% per tahun, dengan  nilai produksi 486.166.245 ton menjadi 1.434.956.984 ton (KKP, 2011). Permintaan pasar akan ikan lele dumbo telah berkembang pesat kenaikan hingga mencapai 18,7 % per tahun, karena ikan lele dumbo  mempunyai  keunggulan  dibanding dengan ikan lele lokal dimana pertumbuhannya  lebih  cepat,  dapat  men- capai  ukuran  lebih  besar  dan  lebih  banyak kandungan telurnya (Mahyuddin, 2007).
Budidaya  lele  tanpa  pergantian  air dapat  menghemat  pemakaian  air  sehingga lebih  ekonomis,  dan  dapat  slakukan  secara intensif.  Sisa  pakan  ikan,  hasil  ekskresi organisme  dan  plankton  yang  mati  serta material  organik  seperti  padatan  yang tersuspensi  maupun  padatan  yang  larut masuk  melewati  sumber  air  ( inflow  water ) merupakan  sumber  bahan  organik  pada media  pemeliharaan.  Hal  ini  menyebabkan akumulasi  bahan  organik  di  perairan.  Input bahan  organik  semakin  bertambah  ber- iringan  dengan  aktivitas  kegiatan  budidaya karena  kebutuhan  pakan  organisme  akuatik mengikuti pertumbuhan biomassanya (Boyd, 1990).
Sistem budidaya tanpa pergantian air menyebabkan  akumulasi  sisa  pakan,  feses, dan kualitas air  yang buruk ( Sitompul dkk. 2012).    Selain  itu,  menurut  Spotte  (1970), sisa  pemberian  pakan  yang  akan  meng- hasilkan  bahan  organik  yang  akan  mem- bentuk ammonia, nitrit, dan nitrat. Ammonia pada  perairan  mampu  menyebabkan  ke- matian  pada  ikan  apabila  kandungannya terlalu  tinggi,  yaitu  lebih  dari  0,8  mg/L
(Stickney,  2005),  sedangkan  nitrit  akan bersifat  toksik  apabila  kadar  nitrit  dalam perairan  lebih  dari  0,05  mg/L  (Moore, 1991).
Bakteri    heterotrof  merupakan  salah satu  agen  biologis  yang  berperan  sebagai organisme  pengurai  sisa  pakan  dan  bahan organik  di  dasar  perairan.  Dengan  pem- berian  bakteri  heterotrof  ini  diharapkan mampu  menurunkan  kadar  ammonia  dan nitrit  pada  budidaya  lele  tanpa  pergantian air.  Menurut  Avnimelech  (1999),  adanya pemanfaatan nitrogen anorganik oleh bakteri heterotrof  mencegah  terjadinya  akumulasi nitrogen  dari  bahan  anorganik  di  dalam kolam  budidaya  sehingga  mampu  me- nurunkan  kualitas  air.  Bakteri  heterotrof memanfaatkan  ammonia  sebagai  sumber energi untuk regenerasi sel (Todar, 2002).

## Materi dan Metode Waktu dan Tempat
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Pendidikan Fakultas Perikanan dan Kelautan pada bulan Juni-Juli 2014. Alat dan Bahan
Alat yang digunakan dalam penelitian  ini  adalah:  pH  meter,  spek- trofotometer,  cuvet,  tabung  reaksi,  gelas ukur,  DO  meter,  pH  meter,  pipet  tetes, termometer, jaring, timbangan digital, peng- garis, ember, bak plastik 16 buah volume 15 L,  aerator,  selang  aerasi  dan  batu  aerasi. Bahan  yang  akan  digunakan  dalam  pene- litian  ini  adalah  bakteri  probiotik  “ A” (Bacillus subtilis, Bacillus apiarius, Lactobacillus  plantarum, dan Nitrosomonas eropea) dengan total count 1x10 6 CFU , “ B” (Bacillus subtilis dan Bacillus licheniformes) dengan total  count 1x10 7 CFU dan “ C” , (Bacillus  subtilis, dan Bacillus  liche- niformes) dengan total  count 1x10 12 CFU , lele  dumbo  ukuran  9  cm,  larutan  Nessler, aquades,  NED  ( Napthil  ethilen  diamin )  -
3
dihidroklorida, larutan sulfanilamide , larutan standar amonia (0,1; 0,2; 0,3; 0,4; 0,5 ppm), larutan standar nitrit (0,025; 0,05; 0,1; 0,25; 0,5; 0,1 ppm).

## Metode Penelitian

## Persiapan Media dan Persiapan Benih
Persiapan  yang  digunakan    yaitu  bak plastik  dengan  volume  15  L.  Sterilisasi  air media  dilakukan  dengan  menggunakan Kalium  Permanganat  dengan  dosis  3  g/m 3 , selanjutnya  didiamkan  selama  sehari  dan dilakukan  pergantian  air  baru  (Shaffrudin dkk.,  2006).  Benih  yang  digunakan  disortir berdasarkan  kualitas  dan  ukuran  terlebih dahulu  dan    dilakukan  penimbangan  berat dan  pengukuran  panjang  awal  .  Benih  yang akan digunakan adalah jenis ikan lele dumbo dengan ukuran panjang 9 cm.
Sebelum  ditebar  benih  diaklimatisasi terlebih  dahulu  selama  5  menit.  Benih  ikan lele dumbo kemudian dimasukkan ke dalam bak  plastik,  dengan  padat  tebar  masing- masing  1000  ekor/m 3 (Shaffrudin  dkk., 2006),  sehingga  didapatkan  padat  tebar  30 ekor/bak.

## Pemeliharaan
Selama pemeliharaan, pemberian pakan  ikan  lele  dumbo  dilakukan  dengan frekuensi  tiga  kali  yaitu  pada  pukul  08.00 pagi,  12.00  siang  dan  16.00  sore.  Pakan yang diberikan sejumlah 3% dari berat tubuh ikan, mengacu pada Purnomo (2012), bahwa pemberian pakan ikan adalah sebanyak 3% - 5%  dari  berat  tubuhnya.  Pemberian  jenis bakteri heterotrof diberikan langsung dengan dosis 0,03ml/15L (Andriyanto, 2010). Pemeliharaan  ikan  lele  dumbo  dilakukan selama 30 hari. Pengamatan dilakukan setiap dua  hari  sekali.  Pengambilan  sampel  air untuk  pengukuran  amoniak  dan  nitrit  di- lakukan  pada  awal  setelah  benih  ditebar, selanjutnya  setiap  dua  hari  sekali  untuk mengetahui  fluktuasi  ammonia  dan  nitrit dalam  media  pemeliharaan.  Untuk  peng-
ukuran  suhu  dan    DO  ( Disolved  Oxygen ) dilakukan  setiap  pagi  dan  sore  hari  selama pemeliharaan.

## Pengukuran kadar Ammonia
Penentuan  kurva  kalibrasi  dengan cara  menyiapkan  larutan  standar  amoniak dengan  konsentrasi  0,1;  0,2;  0,3;  0,4;  0,5 ppm,    ppm  masing  –  masing  50  ml.  Se- lanjutnya  adalah  menambahkan  larutan Nessler  1  ml  pada  masing-masing  kon- sentrasi, di kocok dan didiamkan selama 10 menit.    Kemudian  mengamati  absorbansi masing-masing larutan pada panjang gelombang  425  nm,  dan  membuat  kurva kalibrasi. Pengukuran kadar amoniak dilakukan mengunakan metode Nessler (Sari dkk.,  2012)  yaitu  sampel  sebanyak  50  ml, disaring    dan  dimasukkan  kedalam  Erlen- meyer  100  ml.    Ditambahakan  1  ml  larutan Nessler  kemudian  dikocok  dan  dibiarkan selama  10  menit.  Larutan  sampel  dima- sukkan  dalam  cuvet,  kemudian  diukur dengan  spektrofotometer  dengan  panjang gelombang 425 nm.

## Pengukuran Kadar Nitrit
( Metode  Spektrofotometri  (SNI  06-6989.9- 2004).
Penentuan  kurva  kalibrasi  dengan cara  menyiapkan  larutan  standar  nitrit dengan  konsentrasi  0,025;  0,05;  0,1;  0,25; 0,5;  0,1  ppm  masing  –  masing  50  ml. Menambahkan  larutan  sulfanilamide  1  ml pada  masing-masing  konsentrasi,  di  kocok dan didiamkan selama dua menit. Ditambahkan  1  ml  larutan  NED-dihi- droklorida,  dikocok  dan  didiamkan  selama 10  menit.  Mengamati  absorbansi  masing- masing larutan pada panjang gelombang 543 nm, dan membuat kurva kalibrasi.
Pengukuran kadar absorbansi sampel dengan cara mengambil air sampel sebanyak 50 ml, dan disaring dengan kertas saring,
4
Disetujui/ accepted: 1 Maret 2016

## Tabel 1 Produksi kadar amonia selama 30 hari
Perlakuan Produksi amonia selama 30 hari ± SD Transformasi √(y + 0,5) ± SD P1 0,2641 b ± 0,01356 0,8741 ± 0.0078128 P2 0,2159 a ± 0,01431 0,8461 ± 0.0084247 P3 0,2182 a ± 0,01332 0,8474 ± 0.0078454 P4 0,2092 a ± 0,01157 0,8422 ± 0.0088263 *) superskrip yang berbeda menunjukkan nilai yang berbeda nyata (p<0,05)
Keterangan:
P1: kontrol P2: penambahan probiotik A 0,03 mL/15L P3: Penambahan Probiotik B 0,03 mL/15L P4: Penambahan Probiotik C 0,03 mL/15L
Tabel 2. Produksi kadar nitrit selama 30 hari.
Perlakuan Produksi  nitrit selama 30 hari ± SD Tranformasi √(y + 0,5) ± SD P1 0,0988 b ± 0,00404 0,77382 ± 0,00261 P2 0,0525 a ± 0,00518 0,74330 ± 0,00348 P3 0,0513 a ± 0,00355 0,74249 ± 0,00239 P4 0,0509 a ± 0,00644 0,74223 ± 0,00433 *) superskrip yang berbeda menunjukkan nilai yang berbeda nyata (p<0,05)
Keterangan:
P1: kontrol P2: penambahan probiotik A 0,03 mL/15L P3: Penambahan Probiotik B 0,03 mL/15L P4: Penambahan Probiotik C 0,03 mL/15L
dan  dimasukkan  dalam  Erlenmeyer  100  ml. Sampel  ditambah  dengan  1  ml  larutan sulfanilamide,  kemudian  akan  bereaksi selama  2  menit.  Setelah  itu  ditambahkan  1 ml  larutan  NED-dihidroklorida    kemudian dihomogenkan  selama  10  menit  hingga berwarna  merah  keunguan.  Larutan  di- masukkan diukur menggunakan spek- trofotometer dengan panjang gelombang 543 nm.

## Pengukuran Suhu, pH, dan DO
Pengukuran  kualitas  air  penunjang dilakukan setiap pagi, siang, dan sore setiap harinya.  Pengukuran  suhu  menggunakan thermometer , DO menggunakan  DO meter, dan pH menggunakan pH meter.

## Analisis Data
Pengolahan  data  dilakukan  dengan perhitungan statistik menggunakan metode
ANOVA  ( Analysis  of  Variance )  untuk mengetahui perlakuan yang diberikan (Kusriningrum,  2012).  Data  yang  diperoleh dari  hasil  pengukuran  setiap  hari  dicatat, selanjutnya  dianalisis  dengan  menggunakan ANOVA (pada selang kepercayaan 99%).

## Hasil Kadar Amonia
Produksi  kadar  amonia  selama  30 hari  pada  masing-masing  perlakuan    dapat dilihat pada Tabel 1. Produksi kadar amonia selama  30  hari    dihitung  berdasarkan  kadar amonia pada hari ke 30.
.
Uji statistik terhadap produksi amonia  menunjukkan  adanya  perbedaan yang  nyata,  dengan  p  <  0,05.  Setelah dilakukan  Uji  Jarak  Berganda  Duncan ( Duncan’s  Multiple    Range  Test ),  diketahui bahwa  produksi  amonia  tertinggi  adalah
5

## Tabel 3. Kadar Suhu, pH, dan DO selama 30 hari
No Parameter Perlakuan Kontrol Probiotik A Probiotik B Probiotik C 1 Suhu ( o C) 26,6 - 30,0 26,7 - 30,0 26,7 - 30,0 26,6 - 30,0 2 DO (mg/l) 6,3 – 8,9 6,3 – 8,9 6,3 – 9,0 6,4 – 8,4 3 pH 7,23 – 8,26 7,35 – 8,15 7,29 – 8,20 7,22 – 8,26
pada  P1  yaitu  tanpa  pemberian  probiotik. Produksi kadar amonia terendah ditunjukkan oleh P4 dengan pemberian probiotik  C.

## Kadar Nitrit
Nilai  produksi kadar nitrit selama 30 hari  pada  masing-masing  perlakuan    dapat dilihat  pada  Tabel  2.  Nilai    produksi  kadar nitrit  selama  30  hari    dihitung  berdasarkan kadar nitrit pada hari ke 30.
Uji statistik terhadap produksi menunjukkan adanya perbedaan yang nyata, dengan p < 0,05. Setelah dilakukan Uji Jarak Berganda  Duncan  ( Duncan’s  Multiple Range Test ), dapat diketahui bahwa
produksi  nitrit  tertinggi  adalah  pada  P1 yaitu  tanpa  pemberian  probiotik.  Produkai nitrit    terendah  ditunjukkan  oleh  P4  dengan pemberian  probiotik    C.    Perlakuan  kontrol (P1)  tanpa  pemberian  bakteri  probiotik berbeda  nyata  dengan  P2,  P3,  dan  P4  , dimana  P2,  P3,  dan  P4  tidak  memiliki perbedaan yang nyata.

## Suhu, pH, dan DO
Data  kisaran  kualitas  air  setelah pemeliharaan  selama  30  hari  dengan perlakuan  penambahan  probiotik  yang mengandung bakteri heterotrof, dapat dilihat pada  Tabel  3.  Pengamatan  terhadap  suhu, dan  DO  dilakukan  setiap  pagi  dan  sore. Pengamatan  terhadap  pH  setiap  sehari sekali, dan pengamatan terhadap nitrat setiap dua hari sekali selama masa pemeliharaan.
Hasil  pengukuran  terhadap  produksi amonia selama 30 hari menunjukkan adanya
perbedaan  yang  nyata  antara  pelakuan kontrol dengan perlakuan pemberian probiotik.  Tetapi,  pada  perlakuan  dengan penambahan  probiotik  A  ( Bacillus  subtilis, Bacillus  apiarius,  Lactobacillus  plantarum, dan  Nitrosomonas  europea 1x10 6 CFU),  B (Bacillus subtilis dan Bacillus licheniformes 1x10 7 CFU ) ,  dan  C  ( Bacillus  subtilis, dan Bacillus  licheniformes )  1x10 12 CFU)  tidak berbeda  nyata.  Akumulasi  kadar  amonia yang  diproduksi  oleh  ikan  selama  peme- liharaan  adalah  pada  perlakuan  kontrol sebesar 0,2641 mg/L, perlakuan probiotik B (Bacillus  subtilis  dan  Bacillus  liche- niformes)
sebesar 0,2182 mg/L, perlakuan probiotik A ( Bacillus subtilis, Bacillus apiarius, Lactobacillus
plantrarum, dan Nitrosomonas europea ) sebesar 0,2159 mg/l, dan  probiotik  C    ( Bacillus  subtilis,  Bacillus licheniformes ) sebesar 0,2093 mg/L.
Kadar amonia pada perlakuan kontrol  hari  ke  30  mencapai  0,2641  mg/L. Pada  konsentrasi  ini,  konsentrasi  amonia masih  dalam  ambang  yang  cocok  untuk kehidupan  ikan  lele.  Menurut  Stickney (2005),  bahwa  kandungan  amonia  yang masih  bisa  di  tolerir  oleh  ikan  adalah  <  0,8 mg/L.  Sehigga  konsentrasi  amonia  pada perlakuan kontrol masih dapat di tolerir oleh ikan  lele.  Diduga  bahwa  tingginya  nilai amonia  pada  perlakuan  kontrol  adalah karena  menumpuknya  sisa  pakan  dan  feses dalam  perairan.  Hal  ini  sesuai  dengan pendapat  Spotte  (1970),  bahwa  sisa  pem- berian  pakan  menghasilkan  bahan  organik yang  membentuk  amonia,  nitrit,  dan  nitrat
6
pada  perairan.  Keberadaan  amonia  dalam perairan  mampu  mempengaruhi  kehidupan ikan  karena  mereduksi  masukan  oksigen akibat  rusaknya  insang,  menambah  energi untuk  detoksifikasi,  mengganggu  osmo- regulasi, dan mengakibatkan kerusakan fisik pada jaringan (Boyd, 1990).
Pada  perlakuan  dengan  pemberian bakteri  probiotik  A,  B,  dan  C  produksi amonia pada hari ke 30 secara berturut-turut berada  pada  konsentrasi  0,2159  mg/L; 0,2182  mg/L;  dan  0,2093  mg/L.  Pada konsentrasi  tersebut,  kadar  amonia  lebih rendah daripada perlakuan kontrol. Sehingga dapat  dikatakan  bahwa  perlakuan  dengan penambahan  bakteri  probiotik  A,  B,  dan  C lebih baik daripada perlakuan tanpa probiotik.  Kadar  amonia  selama  masa pemeliharaan masih berada pada batas aman untuk  kehidupan  ikan  lele  sesuai  dengan pendapat Stickney (2005) yaitu <0,8 mg/L.
Akumulasi  amonia  pada  perlakuan menggunakan probiotik C ( Bacillus subtilis, Bacillus  licheniformes )  menunjukkan  jum- lah  yang  terendah  pada  akhir  pemeliharaan. Hal  ini  diduga  karena  jumlah  kepadatan bakteri  penyusun  probiotik  C  ( Bacillus subtilis,  Bacillus  licheniformes )  lebih  tinggi yaitu 1x10 12 CFU, sedangkan pada probiotik A  ( Bacillus  subtilis,  Bacillus  apiarius, Lactobacillus plantrarum, dan Nitro- somonas  europea )  hanya  memiliki  ke- padatan  1x10 6 CFU  dan  probiotik  B (Bacillus  subtilis  dan  Bacillus  liche- niformes) memiliki  kepadatan  1x10 7 CFU. Tingginya kepadatan bakteri  yang diberikan kedalam  media,  dapat  menjadikan  aku- mulasi bahan organik dalam media semakin berkurang karena pemanfaatan bahan organik  oleh  bakteri.  Sehingga  produksi ammonia  dan  nitrit  dan  berasal  dari  aku- mulasi bahan organik dapat menurun.
Menurut Ruyitno et al, ( 1993) bahwa bakteri  heterotrofik  dalam pertumbuhannya memerlukan  senyawa  organik.  Sisa  pem- berian  pakan  menghasilkan  bahan  organik
yang  membentuk  amonia,  nitrit,  dan  nitrat pada  perairan  (Spotte,  1970).  Kandungan bakteri  yang  tedapat  pada  masing-masing probiotik  memanfaatkan  bahan  organik dalam  media.  Bahan  organik  tersebut  di- manfaatkan  bakteri  sebagai  sumber  energi untuk  pertumbuhan  bakteri  (Sugita et.al., 1985).
Bakteri  heterotrof  mengawali  tahap degradasi  senyawa  organik  dengan  se- rangkaian  tahap  reaksi  enzimatis.  Menurut Suarsini (2006), Bacillus sp. memiliki enzim ekstraseluler  yang  dapat  membatu  pen- cernaan  dan  mampu  memperbaiki  kualitas air  melalui  penguraian  dan  perombakan bahan organik dalam air.
Selain  menguraikan  bahan  organik, penghasil ammonia, nitrit, dan nitrat, bakteri hetrerotrof juga mampu memperbaiki kualitas  air  dengan  menurunkan  kadar amonia  dalam  perairan.  Hal  ini  sesuai pendapat Avnimelech (1999), bahwa bakteri heterotrof  mencegah  terjadinya  akumulasi nitrogen  organik  dalam  media  budidaya yang dapat menurunkan kualitas air.
Pada  ketiga  probiotik  yang  digu- nakan,  masing-masing  probiotik  me-miliki kandungan  dua  spesies  bakteri  heterotrof dari golongan Bacillus yaitu Bacillus subtilis dan Bacillus licheniformes pada probiotik B, dan  C,  serta Bacillus  subtilis dan Bacillus apiarius pada probiotik A.
Dugaan  lainya  adalah    jenis  bakteri Bacillus  subtilis dan Bacillus  licheniformes pada  probiotik  B,  dan  C,  serta Bacillus subtilis dan Bacillus apiarius pada probiotik A berperan dalam penyerapan amonia dalam media  pemeliharaan.  Hal  ini  didukung  oleh pendapat  Todar  (2002),  bahwa  bakteri  he- terotrof  berregenerasi  lebih  cepat  dengan memanfaatkan  amonia  sebagai  sumber energi  untuk  memperbanyak  sel  dan  Brune et.al., (2003)  bahwa  penurunan  kadar amonia  terjadi  antara  lain  karena  adanya pemanfaatan  ammonia  oleh  proses  hete- rotrofik  biosintsis  bakteri  yang  meng-
7
Disetujui/ accepted: 1 Maret 2016
hasilkan biomasa bakteri. Sedangkan menurut  Ebeling et.al .,  (2006)  proses pengubahan nitrogen dalam sistem akuakultur  salah  satunya  adalah  proses heterotrofik  bakterial  yang  mengubah  amo- nia  langsung  menjadi  biomasa  bakteri. Bakteri heterotrof yang tumbuh dan berkembang dalam media dapat di- manfaatkan oleh ikan sebagai sumber pakan (McGraw, 2002).
Hasil  pengamatan  terhadap  produsi kadar  nitrit  selama  30  hari  dapat  dilihat  di Lampiran  5.  Fluktuasi  kadar  nitrit  harian dapat  dilihat  pada  Gambar  5.  Pada  grafik fluktuasi  harian  nitrit  menunjukkan  bahwa konsentrasi  nitrit  pada  perlakuan  kontrol lebih  tinggi  daripada  pada  perlakuan mengunakan  probiotik  A( Bacillus  subtilis, Bacillus  apiarius,  Lactobacillus  plantarum, dan  Nitrosomonas  europea 1x10 6 CFU),  B (Bacillus subtilis dan Bacillus licheniformes 1x10 7 CFU ) ,  dan  C  ( Bacillus  subtilis,  Ba- cillus  licheniformes 1x10 12 CFU)  tidak berbeda  nyata.  Adanya  senyawa  nitrit  pada perairan menunjukkan adanya proses nitrifikasi dalam media pemeliharaan.
Konsentrasi  nitrit  tertinggi  adalah pada  perlakuan  kontrol,  pada  hari  ke  30, dengan  konsentrasi  sebesar  0,0988  mg/L. Kadar  nitrit  pada  perlakuan  kontrol  sangat berbahaya  bagi  ikan.  Tingginya  kadar  nitrit dalam  perlakuan  kontrol  diduga  karena karena  tidak  adanya  organisme  yang mengubah  atau  memanfaatkan  nitrit  dalam perairan.  Salah  satu    yang  menyebabkan ikan  mengalami  kematian  adalah  tingginya kadar  nitrit  yang  tinggi  pada  media.  Hal  ini sesuai pendapat Moore (1991), apabila kadar nitrit  dalam  perairan  >0,05  mg/L  dapat bersifat toksik bagi organisme perairan.
Menurut  Effendi  (2003),  pengaruh senyawa  nitrit  pada  ikan  adalah  terjadinya perubahan  transport  oksigen,  sehingga terjadi  kekurangan  oksigen  dalam  tubuh ikan.  Hal  ini  disebabkan  oleh Haemoglobin dalam  darah  yang  seharusnya  mengikat
oksigen  berganti  mengikat  nitrit  sehingga masuk  kedalam  darah.  Menurut  Yuningsih (2000),  apabila  perubahan  Hb  menjadi MetHb  mencapai  20%-30%  dari  Hb  normal maka  akan  terjadi hypoxia ,  yaitu  ke- kosongan  oksigen  dalam  darah  ikan  yang keracunan  nitrit  sehingga  darah  tidak sanggup  lagi  lagi  megangkut  oksigen. Apabila  perubahan  Hb  menjadi  MetHb mencapai  80%-90%  maka  terjadi  kondisi yang  dapat  menyebabkan  keracunan  bagi ikan.
Nitrit  pada  media  dihasilkan  dari akumulasi  bahan  organik  dalam  perairan yang  manghasilkan  amonia,  dan  kemudian mengalami  nitrifikasi  sehingga  terentuk senyawa  nitrit  dalam  media.  Tingginya senyawa  nitrit  pada  perlakuan  kontrol diduga  karena  akumulasi  ammonia  yang tinggi  dan  tidak  dimanfaatkan  atau  tidak diubah  oleh  bakteri  menjadi  bentuk  nitrat. Sesuai  dengan  pendapat  Van  Wyk and Scrapa  (1999),  bahwa  akumulasi  nitrit  pada perairan  terjadi  apabila  proses  lanjutan  dari nitrifikasi  yang  mengubah  nitrit  menjadi nitrat tidak dapat berjalan.
Dari hasil Uji Duncan terhadap kadar nitrit pada perlakuan dengan probiotik A, B, dan  C  tidak  menunjukkan  perbedaan  yang nyata.  Peningkatan  nitrit  pada  perlakuan  A, B, dan C secara berturut-turut adalah 0,0525 mg/L;  0,0513mg/L;  dan  0,0509  mg/L.  Pada konsentrasi  tersebut,  kadar  nitrit  dalam perairan  mulai  berbahaya  bagi  ikan,  karena kadar nitrit dalam media  >0,05 mg/L.
Akumulasi  nitrit  pada  perlakuan menggunakan probiotik C ( Bacillus subtilis, Bacillus licheniformes 1x10 12
CFU) menunjukkan bahwa kadar nitrit pada media adalah  yang  terendah  pada  akhir  peme- liharaan.  Kemungkinan  yang  terjadi  adalah rendahnya  jumlah  ammonia  dalam  per- lakuan dengan pemberian probiotik C,  yang bisa  diubah  melalui  proses  nitrifikasi menjadi  senyawa  nitrit.  Selain  itu,  senyawa nitrit  dapat  dimanfaatkan  oleh  bakteri
8
heterotrof.  Pada  masa  pertumbuhan  bakteri heterotrof  mereduksi  nitrit  menjadi  am- monium  untuk  digunakan  dalam  sintesis biomasa (Gottschalk, 1986).
Fluktuasi  suhu  harian  menunjukkan bahwa suhu pada pagi hari pada kisaran 26- 28 o C,  dan  28-30 o C    pada  sore  hari.  Kon- sentrasi  suhu  ini  masih  berada  dalam  batas normal  suhu  yang  baik  untuk  ikan,  sesuai dengan  pendapat  Hepher and Pruginin (1981),  bahwa  kisaran  suhu  yang  baik  bagi pertumbuhan  ikan  adalah  antara  25 O C  – 30 O C.  Menurut  Effendi  (2003),  suhu  mem- pengaruhi  laju  pertumbuhan  ikan,  meta- bolisme, serta nafsu makan ikan.
Menurut Effendi (2003), suhu mempengaruhi  kadar  DO  dalam  air.  Pada saat  suhu  rendah  kadar  DO  naik,  dan  pada saat  suhu  tinggi  kadar  DO  menurun. Konsentrasi DO selama pemeliharaan berada pada kisaran 6,3 -  9,0 mg/L. Kisaran ini hampir sama pada semua perlakuan, dan masih  berada  pada  batas  aman.  Hal  ini mengacu  pada  pendapat  Fortheath et.al., ( 1993)  bahwa  kadar  aman  DO  untuk  ikan adalah  >  5  mg/l.  Apabila  kadar  DO  dalam perairan  rendah    dapat  berakibat  terhadap pertumbuhan  dan  penurunan  nafsu  makan ikan (Boyd, 1982).
DO  memegang  peran  penting  dalam proses budidaya intensif yang menggunakan tehnologi  bioremediasi.  Hal  ini  dikarenakan aktifitas  mikroorganisme  pendekomposisi bahan  organik  memerlukan  cukup  oksigen. Pada  hasil  pengamatan,  DO  pada  sore  hari cenderung  lebih  tinggi  daripada  pagi  hari. Menurut  Maryam  (2010),    tingginya  kadar DO  pada  siang  hingga  sore  hari  adalah karena  adanya  aktifitas  fotosintesis  oleh fitoplankton  pada  media  pemeliharaan, sedangkan  penurunan  DO  pada  malam hingga  pagi  hari  karena  tingginya  kon- sentrasi  CO 2 hasil  dari  respirasi  ikan,  fito- plankton,  serta  organism  lain  dalam  media pemeliharaan.
Nilai  pH  dalam  perairan  meng- gambarkan  tentang  kondisi  asam  basa  suatu perairan.  Pada  tabel  5.3,  menunjukkan bahwa  nilai  pH  dalam  perairan  pada  semua perlakuan  berada  dalam  kisaran  normal, antara  7,22  –  8,26.  Menurut  Boyd  (1982), pH berada dibawah 6,5 atau lebih tinggi dari 9,0  dapat  menurunkan  kemampuan  repro- duksi  dan  pertumbuhan  ikan.  Dengan demikian  konsentrasi  pH  pada  semua perlakuan masih dalam kondisi yang normal dan tidak berbahaya bagi ikan.

## Kesimpulan
Perlakuan dengan pemberian
probiotik yang mengandung bakteri heterotrof  berpengaruh  terhadap  produksi kadar  amonia  dan  nitrit,  dengan  produksi terendah  oleh  probiotik  C  ( Bacillus  subtilis, dan Bacillus  licheniformis ,  dengan total count 1x10 12 )  dengan  kadar  amonia  sebesar 0,2029 mg/L dan kadar nitrit sebesar 0,0509 mg/L. Budidaya  ikan  lele  dumbo  pada sistem  tanpa  pergantian  air  dengan  meng- gunakan  probiotik  yang  tersusun  oleh dominasi  bakteri  heterotrof    jenis Bacilus dapat  diaplikasikan  untuk  menanggulangi tingginya  akumulasi  ammonia  dan  nitrit selama budidaya

## Daftar Pustaka
Andriyanto,  S.,  N.  Listyanto.,  dan  R. Rahmawati.  2010.  Pengaruh  Pem- berian  Probiotik  Dengan  Dosis  yang Berbeda terhadap Sintasan dan Pertumbuhan  Benih  Patin  Jambal ( Pangaisus  djambal ).  Prosiding  Fo- rum  Inovasi  Teknologi  Akuakultur 2010. 117-122 hal.
Avnimelech,  Y.  1999.  Carbon  Nitrogen Ratio  as  a  Control  Element  in Aquaculture  System.  Aquaculture. 176. 227-235 pp.
Boy, C.E. 1982. Water Quality Management for  Pond  Fish  Culture.  Elsevier
9
Scientific  Publishing.  Co.  Ams- terdam. 319 p. Boyd, C.E. 1990. Water Quality Management  in  Aquaculture  and
Fisheries  Science.  Elsevier  Scientific Publishing  Company.  Amsterdam.
3125p.
Brune,  D.E.,  G.  Schwartz,  A.G.  Eversole, J.A Collier, and T.E Schwedler. 2003. Intensification  of  pond  aquaculture and  high  rate  photo-synthetic  system. Journal  of  Aquaculture  Engineering. 28. 45-86 pp.
Ebeling,  J.M.,  M.B  Timmons.,  and  J.J Bisogni.  2006.  Engineering  Analysis of Thestoichiometry of Photo- autotrophic,  Autotrophic,  and  Hete- rotrophic  Removal  of  Ammonia- Nitrogen  in  Aquaculture  Systems. Aquaculture. 257: 346-358 pp.
Effendi,  H.  2003.  Telaah  Kualitas  Air  Bagi Pengelolaan  Sumber  Daya  Ling- kungan  Peraira.  Kanisius.  Yogya- karta. 257 hal.
Forteath  N.,  L.  Wee,  and    M.  Frith.    1993. Water  Quality.  In:  P.  Hart  and  D.  O’ Sullivan  (eds.).  Recirculation  Sys- tems: Design, Construction and Management.  University  of  Tas- mania at Launceston, Australia.
Gottschalk,  G.  1998.  Bacterial  Metabolism.
2 nd Edition.  Springer  Verlag.  New York.
Hepher,  B.,  and  Y.  Pruginin.  1981.  Com- mercial  Fish  Farming:  with  Special Reference  to  Fish  Culture  in  Israel.
John  Willey  and  Son.  New  York. 261p.
KKP.  2011.  Data  Statistik  Hasil  Perikanan dan Kelautan Indonesia Periode 2005- 2009.  Kementerian  Kelautan  dan Perikanan. 2011. 11 hal.
Kusriningrum, R. S. 2012. Perancangan Per- cobaan.  Airlangga  University  Press. Surabaya. 43 hal.
Mahyudin,  K.  2008.  Panduan  Lengkap Agribisnis  Lele.  Penebar  Swadaya. Jakarta.
McGraw,  W.J.  2002.  Utilization  Of  Hete- rotrophic  And  Autotrophic  Bacteria In  Aquaculture.  Global  Aquaculture Advocate. December 2002. 82-83 Pp. Moore,  A.  1991.  Engineering  Analysis  of Thestoichiometry  of    Photoauto- trophic, Autotrophic, and Hete- rotrophic  Removal  of  Ammonia- Nitrogen  in  Aquaculture  Systems. Aquaculture, 257: 346-358 pp. Purnomo,  P.  D.    2012.    Pengaruh  Penam- bahan  Karbohidrat  pada  Me-dia Budidaya Pemeliharaab terhadap Produksi  Budidaya  Intensif  Nila ( Oreochromis  niloticus ).  Journal  of Aquaculture Management and Technology. Vol 1. No.1.161-179 hal. Rosmaniar.  2011.  Dinamika  Biomassa Bakteri  dan  Kadar  Limbah  Nitrogen pada  Budidaya  Ikan  Lele  ( Clarias gariepinus )  Intensif  secara  Sistem Heterotrofik. Skripsi. Universitas Islam  Negeri  Syarif  Hidayatullah. Jakarta.
Sari, N.W., I. Lukistyowati., dan N. Aryani. 2012.  Pengaruh  pemberian  Temu- lawak  ( Curcuma  xanthorriza Roxb) terhadap  Kelulushidupan  Ikan  Mas ( Cyprinus carpio
L.) Setelah Diinfeksi Aeromonas  hydrophilla .
Jurnal  Perikanan  dan  Kelautan.  Vol. 17:2. Tahun 2012. 43-59 hal.
Shafrudin,  D.,  Yuniarti  dan  M.  Setiawati. 2006.  Pengaruh  Kepadatan  Benih Ikan  Lele  Dumbo  ( Clarias sp.)
terhadap Produksi pada Sistem
Budidaya  dengan  Pengendalian  Ni- trogen  Melalui  Penambahan  Tepung Terigu.  Jurnal  Akuakultur  Indonesia. Vol. 5(2) : 137-147 hal.
Sitompul,  S.O.,    E.  Harpeni.,  dan  B.  Putri. 2012. Pangaruh Kepadatan Azolla sp. yang  Berbeda  terhadap  Kualitas  Air
10
dan  Pertubuhan  Ikan  Lele  Dumbo pada Sistema Tanpa Ganti Air. Jurnal Rekayasa  Dan  Teknologi  Budidaya Perairan. Vol.1:1. Oktober.2012. Spotte,  S.  H.  1970.  Fish  and  Invertebrate Culture: Water Management in
Closed  System.  Wiley  Interscience. New York. 145 p. Stadar  Nasional  Indonesia.  2004.  Cara  Uji Nitrit  (NO 2 )  secara  Spektrofotometri. dalam :  Air  dan  Limbah:  9.  SNI  06- 6989.9-2004. Badan Standarisasi Nasional. Jakarta.
Stickney,  R.  R.  1979. Principles  of  Warm- water  Aquaculture .  A  Wiley-Inter- science  Publication,  John  Wiley  & Sons, Inc. New York.125 p.
Stickney,  R.R.,  2005.  Aquaculture:  An introductory  text.  CABI  Publishing. USA.256 p.
Suarsini,  E.  2006.  Bioremediasi  Limbah Cair  Rumah  Tangga  menggunakan
Konsorsia  Bakteri  Indigen  yang Berpotensi Pereduksi Polutan. Disertasi.  Program  Studi  Pendidikan Biologi. Universitas Negeri Malang.
Sugita,  H.,  U.  Satoshi.,  K.  Daiju.,  and    D.
Yoshiaki  .  1985.  Changes  in  the Bacterial  Composition  of  Water  in  a Carp  Rearing  Tank.  In:  Aquaculture.
Elsvier. Amsterdam. 243-247 pp.
Todar,  K.  2002.  Growth  Of  Bacterial Population. Texbook Of Bacteria. Van  Wyk  P,  and  J.  Scarpa.  1999.  Water
Quality Requirements
and
Management. in :  P.  Van  Wyk,  R. Davis-Hodgkins,  K.L  Laramore,  J. Main,  Mountain,  and  J.  Scarpa.
Farming Marine Shrimp in
Recirculating Freshwater Systems.