PENETAPAN KADAR FLAVONOID TOTAL PADA JUICE DAUN UBI JALAR UNGU ( Ipomoea batatas L.) YANG BERPOTENSI SEBAGAI HEPATOPROTEKTOR DENGAN METODE SPEKTROFOTOMETRI UV-VIS
Suharyanto 1 , Dela Anding Nadia Prima 2 1,2 Prodi D3 Farmasi, Sekolah Tinggi Ilmu Kesehatan Nasional Jl. Solo - Baki, Kwarasan, Sukoharjo, Jawa Tengah, Indonesia Email:Suharyanto522@gmail.com

## ABSTRAK
Hepar  merupakan  organ  intestinal  terbesar  yang berfungsi  diberbagai sistem  metabolik tubuh, apabila enzim yang ada di sel hepar terlepas mengalami kerusakan. Flavonoid adalah salah satu senyawa yang dapat melindungi organ dalam contohnya hati. Jenis senyawa flavonoid terbesar, yang tersebar di buah dan sayur adalah Quersetin . Juice Daun Ubi Jalar Ungu terbukti memiliki kadar  flavonoid.  Masyarakat  kini  dapat  membut juice daun  ubi  jalar  ungu  lalu  diaplikasikan untuk campuran roti, membuat agar-agar ataupun puding. Analisis kualitatif menggunakan Uji Shinoda, NaOH 10%, dan H 2 SO 4 pekatyang hasilnya positif. Analisis kuantitatif menggunakan Spektrofotometri  UV-Vis  penetapan  kadar  flavonoid  total  dilakukan  dengan  metode  AlCl 3 dengan  total  flavonoid  dinyatakan  dalam  QE  (Quersetin  Ekuivalen)  pada  panjang  gelombang maksimum  429,5  nm  dan operating  time 30  menit.  Hasil  rata-rata  kadar  flavonoid  total  yang didapatkan dari juice daun ubi jalar ungu 435,09 mg QE/100g dan nilai koefisien variasi yaitu 1,11094%.
Kata Kunci : Flavonoid total , Juice , Daun Ubi Jalar Ungu, Spektrofotometri UV-Vis

## ABSTRACT
The liver is the largest intestinal organ that functions in various metabolic systems of the body, if the enzymes in the liver cells are detached without damaged. Flavonoids are compounds that can protect internal organs, for example the liver. The largest type of flavonoid compound that is spread in fruits and vegetables is quercetin. Purple sweet potato leaf juice is proven to have levels of flavonoids. People can now make purple sweet potato leaf juice and then apply it to bread  mixes, make jelly  or  pudding.  Qualitative analysis  using the  shinoda  test,  NaOH  10 % and  concentrated  H 2 SO 4 which  results  are  positive.  Quantitative  analysis  using  UV-Vis spectrophotometry determination of total flavonoid levels was carried out by the AlCl 3 method with  total  flavonoids  expressed  in  QE  (Quercetin  Equivalent)  at  a  maximum  wavelength  of 429,5 nm and operating time of 30 minutes. The average total flavonoid content obtained from purple sweet potato leaf juice 435,09 mg QE/100 g and the coefficient of variation is 1.11094%.
Keywords: Total flavonoids, Juice, Purple sweet potato leaf, UV-Vis Spectrophotometry

## LATAR BELAKANG
Hepar adalah organ intestinal terbesar kurang lebih 2,5 % BB orang dewasa pada bagian  kuadran  kanan  atas  abdomen  yang  memiliki  fungsi  antara  lain:  metabolisme tubuh kompleks, pembentuk glukosa, sintesis protein, proses katabolisme sel meliputi, detoksifikasi  obat-obatan,  ammonia,  dan  hormon.  Hepar  berfungsi  sebagai  tempat menyimpan vitamin dan glikogen, serta memiliki fungsi vital mendorong diperlukannya

## Cendekia Journal of Pharmacy
usaha untuk melindunginya dari berbagai gangguan seperti, bakteri, virus, obat-obatan dan  makanan  yang  kita  konsumsi  dapat  bersifat  toksik  sehingga  menimbulkan kerusakan pada organ hati  (Wahida dkk., 2019).
Hepatoprotektor adalah senyawa yang dapat memberikan perlindungan pada hati dari  kerusakan  yang  ditimbulkan  dari  luar  yaitu  obat,  senyawa  kimia,  serta  virus  dan penyebab  dari  dalam  yaitu  sisa  metabolisme  (Hadi,  2000).  Salah  satu  senyawa  yang berperan  penting  sebagai  hepatoprotektor  yaitu  flavonoid.Flavonoid  adalah  senyawa fenolik  yang  secara  umum  tersebar  luas  pada  jaringan  dan  karetonoid  serta  klorofil berperan  dalam  memberikan  warna  seperti  ungu,  oren,  hijau,  kuning,  dan  merah. Turunan  dari  flavonoid  yaitu  flavon,  flavonol,  isoflavonol,  antosianin,  antosianidin, katekin dan proantosianidin (Khoddami et al., 2013, dan  Harbone,1987). Senyawa ini termasukturunan  dari  fenolik  yang  memiliki  struktur  kimia  yaitu  dua  cincin  aromatik benzene yang berikatan dengan 3 atom karbon (C6-C3-C6) (Annisa, 2019).
Salah  satu  tanaman  yang  mengandung  flavonoid  adalah  daun  ubi  jalar  ungu (Sulastri et  al., 2013).  Kandungan  flavonoid  terbesar  pada  daun  ubi  jalar  adalah Quersetin (Eugenio et al., 2017). Senyawa flavonoid dan antosianin pada daun ubi jalar bersifat  sebagai  antioksidan  yang  dapat  mencegah  gangguan  pada  fungsi  hati, menurunkan kadar gula darah, dan mencegah radikal bebas (Anissa, 2019).
Hasil penelitian Wahida dkk. (2019), bahwa fraksi air daun ubi jalar dosis 4,77 mg, 9,54 mg, dan 19,08 mg /kg BB memiliki pengaruh hepatoprotektor pada tikus putih jantan  yang  diinduksi  paracetamol.  Hasil  penelitian  Annisa  (2019),  bahwa  kadar  total fenol  dalam  daun  ubi  jalar  ungu  berkisar  317,73-628,51  mg/100  mg,  total  flavonoid berkisar 696,48-989,61  mg QE/100 g, dan aktivitas antioksidan berkisar antara 83,58- 87,29%.
Berdasarkan  pernyataan  di  atas,  penelitian  ini  dilakukan  dengan  tujuan  untuk menentukan nilai kadar flavonoid total dari juice daun ubi jalar ungu (Ipomoea batatas Lamk. ). Pengujian  kualitatif  dengan  metode  reaksi  warna  dan  uji  kuantitatif menggunakan metode spektrofotometri Visible .

## BAHAN DAN METODE PENELITIAN

## Desain Penelitian
Jenis  penelitian  Karya  Tulis  Ilmiah  ini  adalah  deskriptif  non-eksperimental karena  dilakukan  pemaparan  dan  penetapan  kadar  Flavonoid  Total  dalam juice Daun Ubi Jalar Ungu ( Ipomoea batatas L. ) dengan metode Spektrofotometri Visibel.

## Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Kimia (Laboratorium Instrumental) dan Laboratorium Bahan Alam pada bulan November 2019- Januari 2020.
Populasi dan Sampel

## Populasi
Populasi  dari  penelitian  ini  adalah  daun  ubi  jalar  ungu  ( Ipomoea  batatas L.) yang diperoleh dari provinsi Jawa Tengah.

## Sampel
Sampel daun ubi jalar ungu ( Ipomoea batatas L.) yang digunakan yaitu ubi jalar ungu  yang  berbentuk  jantung,  daun  berwana  dari  ungu-hijau,  berbentuk  spiral  dengan permukaan  tidak  berbuluh,  tepi  daun  rata,  dan  tulang  daun  menyirip  lebar  5-15  cm, panjang  5-30  cm  yang  diperoleh  dari  Ngargoyoso,  Kabupaten  Karanganyar,  Jawa Tengah. Metode pemilihan sampel adalah Random Sampling yaitu pengambilan sampel
yang  homogen  memiliki  karakteristik  dan  memiliki  kemungkinan  terambil  yang berbeda tetapi dalam satu daerah atau satu petani.
Instrumen yang digunakan Alat
Alat yang digunakan adalah Spektrofotometrer visible (Shimadzu UV mini-1280 serial number A12065402452CD), Sepasang kuvet Hellma (Analitics type No 100.600 QG  light  path  lotum),  neraca  analitik  (Ohaus  PA  214,  capacity  210  g,  readability  0,1 mg, repeatability 0,1 mg), labu ukur 10 ml, 25 ml (pyrex), bekker glass 50 ml, 100 ml (pyrex), batang pengaduk (hema), blender (philip), kertas saring, kertas alumunium foil, yellow tip, corong kaca (hema), tabung reaksi (hema).
Bahan
Bahan  yang  diguanakan  adalah  Daun  ubi  jalar  ungu  yang  diperoleh  dari  desa Ngargoyoso Karanganyar, aquades (PT. Bataco), kuersetin p.a. (Sigma Aldrich), AlCl 3 p.a. (Merck), serbuk Mg+HCl (Merck), NaOH (Merck), H 2 SO 4 pekat (Merck), kalium asetat p.a. (Merck), etanol p.a (Merck).

## Pembuatan juice daun ubi jalar ungu
Langkah  pertama  pembuatan juice daun  ubi  jalar  adalah  daun  ubi  jalar  ungu segar dipotong, dan ditimbang sebanyak 100 gram dicuci dengan air mengalir kemudian diblender ditambah air 100 ml. Juice daun ubi jalar disaring kemudian dimasukkan ke dalam gelas ukur untuk mengetahui volume juice yang diperoleh.
Uji kualitatif menggunakan reaksi warna
1) Uji Shinoda
Uapkan  larutan  uji  hingga  kering,  tambahkan  2-3  tetes  etanol,  lalu  ditambah serbuk Mg dan beberapa tetes HCl 5 M. Bila positif senyawa flavonoid ditandai dengan warna merah hingga merah lembayung yang timbul (Endang, 2014).
2) Uji NaOH
Test dengan NaOH 10% dengan cara memasukkan 2 tetes sampel dalam tabung reaksi ditambahkan dengan 2-4 tetes larutan NaOH 10% perubahan warna diamati dari awal  sampel  dimasukkan  hingga  ditambahkan  NaOH  menjadi  warna  kuning-kuning kecoklatan (Kusnadi dan Devi, 2011).
3) Uji H 2 SO 4
Test  dengan  H 2 SO 4 (pekat)  dengan  cara  memasukkan  4  tetes  sampel  dalam tabung  reaksi  tambahkan  2-4  tetes  larutan  H 2 SO 4 (pekat)  (Kusnadi  dan  Devi,  2011). Perubahan warna yang terjadi diamati menjadi merah bata hingga coklat kehitaman. Uji Kuantitatif

## Penentuan kadar Flavonoid Total
Menimbang  sebanyak  10,0  mg  baku  standar  kuersetin  dan  larutkan  dengan sebagian  etanol  p.a  dalam  bekker  glass,  masukkan  ke  labu  ukur  10,0  ml  dan  larutkan dengan etanol p.a sampai tanda batas, hingga diperoleh konsentrasi. Timbang kuersetin 10,0 mg lalu dilarutkan dengan etanol p.a sampai 10,0 mL dan didapatkan larutan baku induk  (1000  ppm),  selanjutnya  buat  seri  kosentrasi  sebesar  4  ppm,  5  ppm,  6  ppm,  7 ppm, 8 ppm, 9 ppm, 10 ppm, kemudian larutan baku induk dipipet 0,04  ml, 0,05 ml, 0,06  ml,  0,07  ml,  0,08  ml,  0,09    ml,  0,10    ml,  masukan  ke  dalam  labu  ukur  lalu ditambahkan  3  mL  etanol  p.a,  0,2  AlCl 3 10  %,  0,2  mL  kalium  asetat  p.a  dan ditambahkan  aquadest  sampai  10  mL  setelah  itu  diinkubasi  selama  30  menit  (Ipandi dkk.,  2016),  sebelum  pengukuran  dilakukan  terlebih  dahulu  optimasi  panjang gelombang  pada  rentang  panjang  gelombang  400-500  nm,  setelah  itu  diukur
absorbansinya  dengan  Spektrofotometri  UV-Vis  pada  panjang  gelombang  428  nm (Puspitasari dan Prayoga, 2016).
Kadar flavonoid dihitung dengan menggunakan persamaan kurva kalibrasi. Data absorbasi  yang  diperoleh  dari  penetapan  kadar  flavonoid  dimasukkan  ke  dalam persamaan  kurva  kalibrasi  sebagai  y,  dengan  demikian  akan  diperoleh  nilai  x  sebagai konsentrasi flavonoid dalam larutan sampel kerja. Hasil dinyatakan dengan kesetaraan larutan standar flavonoid menggunakan baku pembanding kuersetin. Persamaan regresi linear sebagai berikut :
y = bx+a

## HASIL DAN PEMBAHASAN Pembuatan juice daun ubi jalar ungu
Daun  ubi  jalar  ungu  yang  telah  diperoleh  dilakukan  penyortiran  untuk memisahkan yang layak, kemudian dicuci dengan air mengalir untuk memisahkan daun dari pengotor, dan tiriskan. Lalu timbang sempel sebanyak 100 gram dengan 100 ml air lalu  masukkan  ke  gelas  blender,  lalu  blender  hingga  seluruh  bahan  homogen  dan lembut.  Hal  ini,  dilakukan  untuk  memperkecil  ukuran  dari  sampel  daun  dan menghomogenkan  dengan  pelarut  air.  Hasil  pemblenderan  dalam  bentuk juice ,  lalu  di saring dengan kain flanel 2 rangkap hingga didapatkan filtrat ekstrak.

## Uji Kualitatif flavonoid
Uji  kualitatif  flavonoid  terhadap  jus  daun  ubi  jalar  ungu  dimaksudkan  untuk memastikan  bahwa  dalam  ekstrak  tersebut  terkandung  senyawa  metabolit  sekunder flavonoid  dengan  terjadinya  proses  perubahan  warna.  Hasil  uji  kualitatif  dengan  uji Shinoda, uji NaOH 10%, dan uji H 2 SO 4 (pekat) pada juice daun ubi jalar ungu disajikan pada tabel 1.
Tabel 1. Hasil uji kualitatif flavonoid total juice daun ubi jalar ungu ( Ipomoea batatas. Lamk.) Uji Kualitatif Gambar Hasil Ket Uji Shinoda Merah sampai merah lembayung (+) Uji NaOH 10% kuning hingga kuning kecoklatan (+) Uji H 2 SO4 (pekat) Merah bata hingga coklat kehitaman (+)

## 1. Uji kualitatif flavonoid dengan pereaksi NaOH
Uji ini di lakukan untuk mereaksikan antara sampel dengan larutan NaOH pekat. Hasil positif ditandai dengan perubahan warna menjadi kuning. Jika juice daun ubi jalar
ungu menghasilkan warna kuning maka terdapat flavonoid didalam filrat juice tersebut. Warna kuning tersebut menunjukkan adanya flavonoid (Asih, 2009).

## Gambar 1. Reaksi antara flavonoid dengan NaOH (Kusnadi dan Devi, 2011)
Perubahan  warna  ini  terjadi  karena  reaksi  antara  flavonoid  yang  dikandung sampel dengan NaOH. Hal ini dikarenakan senyawa kristin merupakan senyawa turunan dari  senyawa  flavon  yang  mengalami  penguraian  oleh  basa  menjadi  molekul  seperti asetofenon  yang  berwarna  kuning  karena  adanya  pemutusan  ikatan  pada  struktur isoprena setelah penambahan larutan NaOH.

## 2. Uji kualitatif flavonoid dengan pereaksi H₂SO₄
Uji  ini  dilakukan  dengan  cara  menambahkan  larutan  H₂SO₄  ke  dalam  larutan sampel.  Hasilnya  positif  apabila  ditandai  dengan  adanya  perubahan  warna  menjadi coklat kehitaman sampai dengan merah tua (Asih, 2009).
Gambar 2. Reaksi antara flavonoid dengan H 2 SO 4 (Kusnadi dan Devi, 2011)
Perubahan  warna  ini  terjadi  setelah  penambahan  larutan  H₂SO₄  yang  memiliki tujuan untuk pembentukan senyawa  flavonoid (pembentukan garam flavilium) dengan ditandai warna merah pada larutan sampel. Hal ini menunjukkan adanya reaksi oksidasi reduksi antara H₂SO₄ dan flavonoid yang membentuk senyawa kompleks yang ditandai oleh warna merah sampai coklat kehitaman pada sampel (Kusnadi dan Devi, 2011).

## 3. Uji kualitatif flavonoid dengan pereaksi Mg + HCl
Uji ini dilakukan dengan penambahan serbuk Mg serta ditambahkan larutan HCl pada larutan sampel. Hasil positifnya ditandai dengan perubahan warna menjadi kuning atau orange (Ergina dkk., 2014).
Gambar 3. Reaksi antara flavonoid dan Mg+HCl (Ergina dkk., 2014)
Reaksi antara senyawa flavonoid dengan Mg+ HCl ditunjukkan pada gambar 3. Penambahan serbuk magnesium dan HCl pekat adalah untuk mereduksi inti benzopiron sehingga  terbentuk  garam  flavilium  berwarna  merah  atau  jingga.  Penambahan  HCl mengakibatkan  terjadinya  reaksi  oksidasi  reduksi  antara  logam  Mg  sebagai  pereduksi dengan senyawa flavonoid (Ergina dkk, 2014).
Uji Kuantitatif flavonoid total

## Penentuan operating time quersetin
Operating  Time memiliki  tujuan  untuk  mengetahui  waktu  pengukuran  suatu senyawa yang diperoleh saat absorbansi paling stabil. Operating time dilakukan dengan mengukur  antara  waktu  pengukuran  dengan  absorbansi  larutan.  Penetapan operating time perlu  dilakukan  untuk  meminimalkan  terjadinya  kesalahan  pengukuran.  Hal  ini disebabkan karena senyawa senyawa yang akan diukur absorbansinya dalam penelitian ini  merupakan  suatu  senyawa  kompleks  antara  kuersetin  dengan  AlCl₃.  Senyawa kompleks  ini  membutuhkan  waktu  agar  reaksi  yang  terbentuk  stabil.  Bila pengukuran dilakukan  sebelum  waktu operating  time ,  maka  terdapat  kemungkinan  reaksi  yang terbentuk belum sempurna. Penentuan operating time pada tabel 2. menunjukkan hasil bahwa  nilai  absorbansi  yang  stabil  dimulai  dari  menit  ke-30,  maka  pengukuran absorbansi dilakukan pada menit ke-30, hal ini menunjukkan bahwa mulai menit ke-30 senyawa  flavonoid  telah  habis  bereaksi  dengan  pereaksi  AlCl 3 yang  ditandai  dengan pembacaan nilai absorbansi  yang stabil angka 0,335, pembacaan ini dilakukan pada tiga angka  dibelakang  koma  karena  angka  keempat  merupakan  angka  semu  maka keberadannya dapat diabaikan.
Tabel 2. Hasil Operating Time (waktu dalam satuan menit)
TIME ABS TIME ABS TIME ABS 1 0,342 16 0334 31 0,335 2 0,342 17 0,336 32 0,335 3 0,343 18 0,337 33 0,336 4 0,341 19 0,337 34 0,336 5 0,339 20 0,337 35 0,335 6 0,338 21 0,337 36 0,336 7 0,338 22 0,336 37 0,336 8 0,338 23 0,335 38 0,336 9 0,339 24 0,337 39 0,335 10 0,337 25 0,337 40 0,336 11 0,336 26 0,336 41 0,336 12 0,336 27 0,336 42 0,335 13 0,336 28 0,335 43 0,335 14 0,334 29 0,335 44 0,336 15 0,333 30 0,335 45 0,336
Penentuan panjang gelombang maksimum quersetin
Penentuan  panjang  gelombang  maksimum  memiliki  tujuan  untuk  menentukan panjang  gelombang  pengukuran  dimana  kompleks  antara  kuersetin  dengan  AlCl₃ memberikan  absorbansi  optimum.  Penetapan  panjang  gelombang  maksimum merupakan  faktor  penting  dalam  analisa  kimia  dengan  metode  spektrofotometri. Pengukuran  pada  panjang  gelombang  maksimum  akanmemberikan  perubahan absorbansi  paling  besar  untuk  setiap  satuan  kadar,  sehingga  jika  akan  dilakukan pengukuran ulang dan replikasi akan meminimalkan terjadinya kesalahan pengukuran.
Dalam analisis ini panjang gelombang yang dipakai adalah panjang gelombang maksimum, panjang gelombang maksimum yang diperoleh sebesar 429,5 nm memiliki absorbansi  sebesar  0,375  untuk  konsentrasi  7  ppm.  Apabila  panjang  gelombang maksimum berbentuk lurus kurva dengan absorbansi linier maka hukum Lambert-Beer terpenuhi (Gandjar dan  Rohman, 2012). Hasil analisis apabila kurva linier maka  akan mendapatkan nilai r mendekati angka 1, dan memenuhilah syarat linieritas.

## Gambar 4. Hasil panjang gelombang maksimum dalam bentuk grafik

## Penentuan kurva baku
Penentuan kurva baku bertujuan untuk mengetahui hubungan antara konsentrasi larutan  dengan  nilai  absorbansinya  sehingga  konsentrasi  sampel  dapat  diketahui. Apabila hukum lambert-Beer terpenuhi maka kurva baku berupa garis lurus (Grace et al. , 2015). Pada penelitian ini penentuan kurva baku dilakukan pada seri konsentrasi 4 ppm, 5 ppm, 6 ppm, 7 ppm, 8 ppm, 9 ppm, dan 10 ppm. Hal ini dilakukan supaya hasil nilai  absorbansi  yang  dihasilkan  memenuhi  persyaratan Lambert-Beer antara  0,2-0,8. Pengukuran  yang  dihasilkan  menunjukkan  semakin  tinggi  nilai  konsentrasi  maka semakin  tinggi  absorbansi  yang  dilihat  di  gambar  6  pada  penentuan  kurva  baku diperoleh  persamaan  Y=  0,0416  X  +  0,0853.  Persamaan  ini  untuk  menghitung  kadar flavonoid  dalam  sampel  daun  ubi  jalar  ungu  (y)  nilai  absorbansi  dan  (x)  menyatakan kadar flavonoid dalam sampel.
Nilai  koefisien  korelasi  (r)  menunjukkan  hubungan  yang  linier  antar  dua variabel. Nilai r yang diperoleh pada penelitian ini adalah 0,9983. Syarat minimal dari nilai r adalah 0,997 (Saifudin, 2011). Hal ini dikarenakan nilai r yang baik mendekati 1 maka kurva akan linier antara konsentrasi dengan absorbansi.
Gambar 5. Hasil penentuan kurva baku Quarsetin

## Gambar 6. Grafik Hasil penentuan kurva baku Quarsetin

## Penetapan kadar flavonoid total juice daun ubi jalar ungu
Penetapan  kadar  flavonoid  total juice daun  ubi  jalar  ungu  dilakukan  dengan metode kolorimetri dengan larutan baku Quersetin . Pada penelitian yang dilakukan oleh (Anisa, 2019) menyatakan bahwa pada daun ubi jalar ungu mengandung flavonoid jenis Quersetin .    Pada  penetapan  kadar  flavonoid  total  larutan  sampel  ditambahkan  AlCl 3 maka  terjadi  pembentukan  kompleks  antara  flavonoid  dan  AlCl 3, menyebabkan pergeseran panjang gelombang ke arah sinar visibel yang ditandai dengan adanya warna kuning pada larutan.
Gambar 7. Reaksi antara flavonoid dengan AlCl 3 (Salmia, 2016)
Penetapan  kadar  flavonoid  dengan  prinsip  metode  kolorimetri  AlCl 3 adalah pembentukan kompleks, sehingga terjadi pergeseran panjang gelombang ke arah visibel (tampak)  yang  ditandai  dengan  larutan  menghasilkan  warna  yang  lebih  kuning. Berdasarkan gambar 7, AlCl 3 bereaksi dengan gugus keto pada C4 dan gugus OH pada C5 pada senyawa flavonol membentuk senyawa kompleks yang stabil (Salmia, 2016). Penambahan  kalium  asetat  berfungsi  untuk  menstabilkan  senyawa  kompleks  yang terbentuk.
Kadar  flavonoid  total  pada juice daun  ubi  jalar  ungu  dinyatakan  pada  mg QE/100 g yang merupakan ekuivalensi Quersetin dalam setiap 100 gram sampel. Kadar rata-rata flavonoid total yang terkandung pada juice daun ubi jalar ungu yang diketahui dari  tabel  3  adalah  435,09  mg  QE/100  g. Pada  penelitian  sebelumnya  yang  dilakukan oleh  Anissa  (2019),  melakukan  penelitian  penentuan  senyawa  flavonoid  total  dari ekstrak etanol daun ubi jalar ungu berkisar 696,48 - 989,61 mg QE/100 g yang bila di bandingkan  dengan juice daun  ubi  jalar  ungu  yang  diteliti  kadar  flavonoidnya  lebih sedikit.  Bila  dibandingkan  dengan  penelitian  yang  dilakukan  oleh  Rahayu  (2014),  uji antioksidan  kandungan  fenolat  dan  flavonoid  total  ekstrak  etanol  daun  ubi  ungu  yang dikeringkan  menggunakan Freeze  Drying menunjukan  hasil  kadar  flavonoid  sebesar
y = 0,0416x + 0,0853 R² = 0,9983 0 0,2 0,4 0,6 0 5 10 ab so rb an si Konsentrasi (ppm) Kurva hubungan konsentrasi dengan absorbansi absorbansi Linear (absorbansi)
Linear (absorbansi)
39,708  QE  dan  8,041  QE  maka  penelitian juice daun  ubi  jalar  Ungu  memiliki  kadar yang lebih rendah sebesar 0,43509 QE karena dalam perlakuan sampel yang digunakan tidak mengalami proses ekstraksi dan pelarut yang digunakan yaitu air, sehingga dalam proses  penyariannya  tidak  optimal  serta  kadar  senyawa  flavonoidnya  yang  ikut  larut tidak  begitu  banyak  yang  didapatkan.  Penetapan  kadar  ini  dihitung  nilai  koefisien variasi  (KV)  yang  bertujuan  untuk  mengetahui  kesesuaian  hasil  analisis  satu  dengan yang lainnya yang diperoleh dari sampling acak berulang-ulang dari sampel homogen. Syarat  nilai  %  KV baik yaitu  <  2%  (Harmita,  2004).  Dari  hasil  data  yang  didapatkan nilai %KV sebesar 1,32823 % yang artinya data didapatkan dengan proses yang teliti.
Tabel 3. Hasil penentuan kadar flavonoid pada sampel Daun Ubi Jalar Ungu
Rep Pengulangan Kadar Flavonoid (mg QE/g) Rata-rata kadar Flavonoid (mg QE/g) ±SD % KV 1 1 4,0625 4,1106±0,048 1,16771% 2 4,1106 3 4,1586 2 1 4,8076 4,8557±0,0481  0,9905% 2 4,9038 3 4,8558 3 1 4,0385 4,0865±0,048 1,1746% 2 4,0865 3 4,1365 Rata-rata kadar flavonoid total 4,3509±0,048 1,1109%

## SIMPULAN
Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan dapat disimpulkan bahwa: Hasil  dari  penetapan  kadar  flavonoid  total  pada juice daun  ubi  jalar  ungu  ( Ipomoea batatas Lamk.) diperoleh kadar rata-rata sebesar 435,09 mg QE/100 g.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Peneliti  mengucapkan  banyak  terimakasih  kepada  Sekolah  Tinggi  Ilmu Kesehatan  Nasional  khususnya  Laboratorium  Teknologi  Farmasi  Bahan  Alam  dan Laboratorium  Kimia  Analisis,  yang  telah  memfasilitasi  kebutuhan  sarana,  prasarana, dan  perpustakaan  yang  telah  memberikan  refrensi  berupa  buku-buku  dalam  proses penyusunan penelitian.

## DAFTAR PUSTAKA
Anissa,  N.  (2019).  Kandungan  Total  Fenol,  Flavonoid,  Klorofil  Dan  Aktivitas Antioksidan Pada Berbagai Klon Daun Ubi Jalar ( Ipomoea batatas L .), Skripsi,
Fakultas Pertanian Universitas Bandar Lampung.
Asih,  A.,  (2009).  Isolasi  dan  Identifikasi  Senyawa  Isoflavon  dari  Kacang  Kedelai (Glycine  max.),  Thesis, Jurusan  Kimia  FMIPA,  Universitas  Udayana,  Bukit Jimbaran.
De Groot,  H,  dan    U., Rauen.  (1998).  Tissue Injury  by  Reactive Oxygen  Species  and The protect Effects of Flavonoid, dalam Fundamental Clinical Pharmacology, 12:249-255.
Endang, H. (2014 ). Analisis Fitokimia, EGC, Jakarta, 114-15.
Ergina,  Nuryanti,  S.,  dan  Pursitasari,  I.D.,  (2014).  Uji  Kualitatif  Senyawa  Metabolite Sekunder  Pada  Daun  Palado (Agave  agustifolia) Yang  Diekstraksi  Dengan Pelarut Air dan Etanol, Journal Akademik Kimia, 3(3):165-172.
Eugenio,  M.H.A.,  Pereira,  R.G.F.A.,  Abreu,  W.C.,  dan  Pereira,  M.C.A.  (2017). Phenolic  compounds  and  antioxcidant  activity  of  tuberous  root  leaves, International Journal of Food Properties , 20(12):2966-2973. Ganjar,  I.G.,  dan  Rohman,  A.  (2012). Kimia  Farmasi  Analisis ,  Yogyakarta,  Pustaka Pelajar.
Grace, F,X., C, Darsika, K.V., Sownya, K., Suganya, and S, Shanmugranathan. (2015). Preparation  and  Evaluation  of  Herbal  Peel  of  Mask, American  Journal  of Pharm Tech Research, (5):33-336. Hadi,  S.  (2000). Diagnosis  Ultrasonik  Pada  Sirosis  Hati  dalam  Hepatologi, Mandar Maju, Jakarta.
Harmita.  (2004).  Petunjuk  Pelaksanaan  validasi  Metode  dan  Cara  perhitungannya, Majalah Ilmu Kefarmasian , 1(3):117-135.
Ipandi,  i.,  Liling  ,  T.,  Prayitno,  B.  (2016).  Penentuan  Kadar  Flavonoid  Total  Dan Antioksi  dan  Ekstrak  Etanol  Daun  Kajajahi (Leucosykecapitellata  Wedd ), Jurnal Pharamascience , 3(1):93-100.
Kusnadi,E.T.,  dan  Devi.  (2017).  Isolasi  dan  Identifikasi  senyawa  Flavonoid  Pada Ekstrak  Daun  Sledri  ( Apium  graveolens L.)  dengan  metode  Refluks, PSEJ. 2(1). 56-67.
Puspitasari, D.A., dan Prayoga, L.S. (2016). Pengaruh Waktu Perebusan terhadap kadar Flavonoid  Total  Daun  Kersen  ( Muntingia  calabura ), Inovasi  Teknik Kimia. 1(2):104-108.
Rahayu, T. (2014). Uji Antioksidan, Kandungan Fenolat Dan Flavonoid Total Ekstrak Etanol  Dari  Daun  Ubi  Jalar  Ungu (Ipomoea  batatas.L.),  Skripsi, Fakultas Farmasi Universitas Muhammadiyah Surakarta.
Saifuddin, A. (2011). Metode Penelitian, Pustaka Pelajar, Yogyakarta Salmia,  S.  (2016).  Analisis  Kadar  Flavonoid  Total  Ekstrak  Kulit  Batang  Kedondong Bangkok (Spondias dulcis) dengan Metode Spektrofotometri UV-Vis, Skripsi , Universitas Alauddin Makassar , 48.
Sulastri,  Erlidawati,  Syahrial,  Nazar,  M.,  dan  Andayani,  T.  (2013).  Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol Daun Ubi Jalar Ungu ( Ipomoea batatas L. ) Hasil Budidaya Daerah Saree Aceh Besar, Jurnal Rekayasa Kimia dan Lingkungan , 9(3):125-130.
Wahidah, L.K., Ramadhan, T.,Rima. I.S.  (2019). Fraksi Air Daun Ubi Jalar ( Ipomoea batatas L.)  Sebagai  Hepatoprotektor  Terhadap  Tikus  Putih  Jantan  Yang Diinduksi Paracetamol, Jurnal Farmasi Lampung, 8:39.
Winarsi, H. (2007). Antioksidan Alami dan Radikal Bebas, Kanisius,Yogyakarta.