This work is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License

## Habitus Aquatica
Journal homepage: http://journal.ipb.ac.id/index.php/habitusaquatica
Pertumbuhan Chlorella sp. dan Dunaliella sp. pada intensitas cahaya yang berbeda Growth of Chlorella sp. and Dunaliella sp. at different light intensities
Ega Hana Masitoh 1 *, Bambang Widigdo 2 , Niken Tunjung Murti Pratiwi 2
1 1 Program Studi Manajemen Sumberdaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University, Bogor, 16680, Indonesia
2 Departemen Manajemen Sumberdaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University, Bogor, 16680, Indonesia
Received 23 Mei 2024          Received in revised 18 Agustus 2024          Accepted 20 Agustus 2024

## ABSTRAK
Pertumbuhan fitoplankton, seperti Chlorella sp. dan Dunaliella sp. dipengaruhi oleh intensitas cahaya. Penelitian bertujuan untuk menganalisis keterkaitan antara kepadatan Chlorella sp. dan Dunaliella sp. dengan besar intensitas cahaya yang berbeda. Kedua jenis fitoplankton tersebut ditumbuhkan pada intensitas cahaya 1000 lux, 3000 lux, dan 7000 lux. Sumber pencahayaan didapat dari lampu pendah putih ( cool daylight TLD).  Kepadatan  diamati  setiap hari selama 10 hari menggunakan haemocytometer. Analisis data dilakukan untuk menganalisis signifikansi antara pertumbuhan sel  pada kondisi intensitas cahaya yang berbeda. Hasil penelitian menunjukkan bahwa kepadatan Chlorella sp. dan Dunaliella sp. tertinggi didapatkan pada intensitas cahaya 1000 lux, (4,8 × 10 6 sel/mL dan 1,33 × 10 6 sel/mL)  sedangkan kepadatan terendah  didapatkan pada intensitas cahaya 7000 lux.  Kepadatan Chlorella sp. Lebih dipengaruhi oleh ortofosfat, sedangkan Dunaliella sp. lebih dipengaruhi oleh keberadan nitrat. Secara umum tampak bahwa perbedaan intensitas cahaya berpengaruh secara signifikan terhadap kepadatan Chlorella sp. dan Dunaliella sp.
Kata kunci: intensitas cahaya, kultur, mikroalgae

## ABSTRACT
Phytoplankton growth, such as Chlorella sp. and Dunaliella sp. is influenced by light intensity. The study aims to analyze the relationship between the density of Chlorella  sp. and Dunaliella  sp. with different light intensities. Both types of phytoplankton were grown at light intensities of 1000 lux, 3000 lux, and 7000 lux. The lighting source was obtained from a white, fluorescent lamp (cool daylight TLD). Density was observed every day for ten days using a hemocytometer. Data analysis was carried out to analyze the significance of cell growth at different light-intensity conditions. The results showed that the highest density of Chlorella sp. and Dunaliella sp. was obtained at a light intensity of 1000 lux (4.8 × 106 cells/mL and 1.33 × 106 cells/mL), while the lowest density was obtained at a light intensity of 7000 lux. The density of Chlorella sp. was more influenced by orthophosphate, while Dunaliella sp. was more influenced by the presence of nitrate. In general, it appears that differences in light intensity have a significant effect on the density of Chlorella sp. and Dunaliella sp.
Keywords: culture, light intensities, microalgae
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45

## 1. Pendahuluan
Fitoplankton atau mikroalgae melakukan fotosintesis dengan mengkonversi energi cahaya dan karbon dioksida (CO 2 ) menjadi biomassa. Beberapa    fitoplankton  yang sering dijumpai terdiri dari Diatom, Dinoflagellata, Chlorophyceae, dan Cyanophyceae (Raja et al. 2014). Fitoplankton memiliki peran penting dalam ekosistem perairan, baik perairan pesisir dan laut, serta perairan tawar, seperti kolam dan danau  (Salmaso et al. 2015).  Tambak merupakan salah satu ekosistem buatan  di wilayah pesisir,  yang  sesuai dengan tipe operasionalnya, masih memerlukan kinerja fitoplankton  (Widiatmaka et al .  2016).  Salah satu peran dari fitoplankton  pada tipe tambak kovensional adalah sebagai sumber pakan alami bagi udang, terutama udang stadium pasca larva (Pachiappan et al. 2015). Fitoplankton juga dapat memperbaiki kualitas air (Budiardi et al. 2007). Hal ini membuat keberadaan fitoplankton dalam tambak menjadi salah satu faktor yang mempengaruhi produktivitas udang. Salah satu kelompok  fitoplankton yang keberadaannya dibutuhkan dalam tambak udang adalah Chlorophyceae, seperti Chlorella dan Dunaliella . Kedua jenis ini  dapat hidup pada salinitas tinggi, sehingga dapat ditemukan di air tambak dengan salinitas lebih dari 35 ppt. Chlorella sp. dan Dunaliella sp. dapat menjadi sumber makanan yang bernutrisi bagi udang dan dapat meningkatkan derajat kelangsungan hidup udang melalui peningkatan daya tahan tubuh (Pakravan et al . 2018; Félix et al . 2017). Chlorella sp. dan Dunaliella sp. juga dapat meningkatkan kualitas air tambak. Kedua fitoplankton dapat mengurangi konsentrasi nutrien terlarut berupa nitrit (NO 2 ) dan total ammonia nitrogen (TAN)  yang bersifat  racun bagi udang (Kumar et al. 2015; Andreotti et al. 2019).
Keberadaan fitoplankton dipengaruhi oleh intensitas cahaya. Intensitas cahaya menggambarkan jumlah foton yang diserap bidang dengan luas tertentu. Intensitas cahaya yang terlalu rendah ataupun terlalu tinggi dapat menghambat pertumbuhan fitoplankton.
Peristiwa ini disebut dengan photolimitation dan photoinhibition (Metsoviti et al. 2019). Selain itu,  fitoplankton yang terpapar cahaya berintensitas tinggi akan lebih rentan terhadap dampak buruk cahaya UV. Cahaya UV, terutama cahaya UVB, dapat merusak protein dan DNA sel, menghambat fotosintesis dan penyerapan nutrien, serta mengubah komposisi biokimia sel (Gao et al . 2007). Kelangsungan hidup dan kepadatan fitoplankton pada tambak tidak terlepas dari pengaruh intensitas cahaya. Untuk memperoleh manfaat dari keberadaan fitoplankton pada tambak secara optimal, pengaturan intensitas cahaya diperlukan. Pengaturan intensitas cahaya ini diharapakan dapat mendukung pertumbuhan fitoplakton.  Penelitian ini bertujuan untuk menganalisis pengaruh perbedaan intensitas cahaya terhadap kepadatan  fitoplankton dari jenis Chlorella sp. dan Dunaliella sp..

## 2. Metodologi
2.1. Waktu dan Lokasi Penelitian
Penelitian dilaksanakan pada bulan April sampai Juni 2020. Percobaan kultur fitoplankton dilakukan di Laboratorium Riset Plankton dan analisis kualitas air dilakukan di Laboratorium Produktivitas dan Lingkungan Perairan, Divisi Produktivitas dan Lingkungan  Perairan, Departemen Manajemen Sumberdaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.

## 2.2. Persiapan dan Pengumpulan Data
Ruang dan alat yang digunakan untuk kegiatan kultur dipersiapkan dalam keadaan steril. Rak kultur, meja kultur, dan bagian di sekitarnya disterilisasi dengan penyemprotan alkohol 97%. Sterilisasi alat gelas dilakukan melalui pencucian menggunakan larutan HCl 10%, pembilasan dengan air, dan dilakukan sterilisasi kering menggunakan oven dengan suhu 170 °C. Sterilisasi media kultur dilakukan dengan autoklaf. Kualitas air yang diukur selama kegiatan kultur adalah suhu, pH, dan salinitas.
Media budidaya fitoplankton yang digunakan
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
dalam penelitian ini adalah media air laut buatan provasoli (Provasoli et al . 1957). Bibit awal Chlorella sp. dan Dunaliella sp. diperoleh dari pengembangbiakan stok yang telah disiapkan di Laboratorium Riset Plankton. Masing-masing jenis dikembangbiakkan dalam media yang terpisah. Pemeliharaan stok dilakukan di ruangan ber-AC yang menerima cahaya lampu berintensitas 685 lux. Suhu ruangan berada pada rentang  24─25 °C. Penyiapan bibit awal dilakukan hingga kepadatan masing-masing jenis mencapai setidaknya 1,0×10 7 sel/mL. Kultur fitoplankton dilakukan dalam sembilan stoples kaca; masing-masing berisi 1 liter kultur multispesies yang setiap spesies setidaknya berjumlah 1,0×106 sel/mL. Perlakuan yang diberikan adalah A1 (intensitas pencahayaan 1000 lux), A2 (3000 lux), dan A3 (7000 lux). Besar intensitas pencahayaan didasarkan pada rentang intensitas cahaya matahari di wilayah pesisir (Fauziah et al . 2019). Kesembilan stoples kaca berisi kultur disusun di rak kultur, dengan sumber pencahayaan berupa lampu pendar putih ( cool daylight fluorescent lamp ). Lampu ini memancarkan cahaya dan cahaya UV yang terdiri dari UVA, UVB, dan UVC.  Intensitas cahaya UVA yang dipancarkan terukur sebesar 2,4%, UVB sebesar 0,05%, dan UVC sebesar 0,09% dari intensitas cahaya tampak (Cebula et al . 1995). Penyusunan lampu dilakukan sebagai berikut: 1. Dua buah lampu pendar tubular putih berdaya 18 watt diposisikan 20 cm di atas mulut stoples kultur, untuk intensitas cahaya 1000 lux; 2. Empat buah lampu pendar tubular putih berdaya 18 watt diposisikan 20 cm di atas mulut stoples kultur, untuk intensitas cahaya 3000 lux; 3. Sebuah lampu pendar tubular putih berdaya 65 watt diposisikan 10 cm di atas mulut stoples kultur, untuk intensitas cahaya 7000 lux. Rancangan percobaan yang dipilih dalam penelitian adalah rancangan acak lengkap (RAL) in time . Kegiatan kultur dilakukan selama 10 hari dengan suhu ruangan diatur pada rentang 25─27  °C  selama  waktu  pemeliharaan. Pengurangan volume akibat evaporasi dikontrol dengan penambahan media baru hingga volume
semula. Nutrien dianalisis di awal, tengah, serta akhir periode kultur. Kepadatan fitoplankton dicacah setiap hari menggunakan haemocytometer, dan dihitung menggunakan formula (IOC 2010).
N= n ju mL ah kotak yang diamati × 10 4
Keterangan: N  : kepadatan fitoplankton (sel/mL) n  : jumlah total fitoplankton yang diamati

## 2.3. Analisis Data
Perhitungan laju pertumbuhan dilakukan menggunakan formula Gómez et al. (2017) berikut  K= (ln N t – ln N 0 ) t .  K  merupakan  laju pertumbuhan (hari -1 ), N t adalah kepadatan pada hari ke-t (sel),  N 0 merupakan  kepadatan  pada hari ke-0 (sel), dan t adalah selang waktu antara hari ke-0 dan hari ke-t (hari).
Doubling time menggambarkan waktu yang diperlukan fitoplankton untuk mencapai jumlah sel sebesar dua kali lipat jumlah sel awal. Doubling time dihitung menggunakan formula Hossain dan Mahlia (2019).  Uji normalitas dilakukan untuk mendapatkan gambaran mengenai  distribusi data penelitian. Uji normalitas yang dipakai adalah Kolmogorov– Smirnov (KS)  (Drezner et al. 2010).  Uji homogenitas dilakukan untuk menentukan sama atau tidaknya ragam suatu kelompok data. Persamaan uji Levene (W)    (Lee et al. 2010) adalah sebagai berikut W = ( 𝑁𝑁−𝑘𝑘 ) ∑ 𝑛𝑛 𝑖𝑖 𝑘𝑘 𝑖𝑖=1 ( Z 𝑖𝑖 −𝑍𝑍 ) 2 ( 𝑘𝑘−1 ) ∑ ∑ �𝑧𝑧 𝑖𝑖𝑖𝑖 −𝑍𝑍 𝑖𝑖 � 2 𝑛𝑛𝑖𝑖 𝑖𝑖=1 𝑘𝑘 𝑖𝑖=1 . Selain itu dilakukan analisis ragam rancangan acak lengkap (RAL) in time serta uji korelasi Pearson.

## 3. Hasil dan Pembahasan
3.1. Hasil Gambar 1 menunjukkan bahwa kepadatan tertinggi sel Chlorella sp. didapatkan pada perlakuan intensitas cahaya 1000 lux, diikuti perlakuan 7000 lux dan 3000 lux. Puncak kepadatan terjadi di hari ke-4 pengamatan. Sementara,  kepadatan sel Dunaliella sp.
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
tertinggi, juga terjadi pada perlakuan 1000 lux, namun dengan jumlah capaian yang relatif jauh lebih rendah dari Chlorella .
Gambar 1. Kepadatan kultur Chlorella sp. dan Dunaliella sp..
Nilai rata-rata suhu terukur sebesar 25,8±0,4 °C, pH sebesar 8,1, dan salinitas sebesar 28 ppt. Hasil pengukuran menunjukkan bahwa ketiga parameter berada di rentang nilai yang sesuai untuk kultur Chlorella sp. Singh dan Singh (2015) menyatakan bahwa Chlorella sp. dapat tumbuh pada suhu 22 °C–30 °C, dengan suhu optimal sebesar 25 °C. Produksi Chlorella sp. akan tinggi pada pH basa (7 ‒ 9) (Gong et al. 2014). Sementara, salinitas yang sesuai untuk kultur Chlorella sp.  adalah  sebesar 25 ‒ 30 ppt (Singh and Singh 2015). Ketiga parameter juga berada pada rentang nilai yang sesuai untuk kultur Dunaliella sp. Kusdarwati et al. (2019) menyatakan bahwa Dunaliella sp. tumbuh dengan baik pada suhu
25 ‒ 30 °C dan pH 8 ‒ 9. Dunaliella sp. dapat tumbuh pada salinitas  20 ‒ 40 ppt, dengan rentang optimal sebesar 25 ‒ 35 ppt (Setiasih et al. 2020). Laju pertumbuhan (K) dan doubling time (T d ) masing-masing jenis fitoplankton disajikan dalam Tabel 1. Laju pertumbuhan Chlorella sp. tertinggi dan doubling time terpendek terdapat pada perlakuan intensitas 3000 lux. Sementara, untuk Dunaliella sp. terdapat pada perlakuan 7000 lux.
Tabel 1 .  Laju pertumbuhan (K)  dan doubling time (Td) hasil kultur.
Perlakuan Chlorella sp. Dunaliella sp. K (hari -1 )  T d (hari) K (hari -1 ) T d (hari) 1000 lux 0,226 3,072 0,144 4,819 3000 lux 0,257 2,697 0,339 2,042 7000 lux 0,256 2,708 0,363 1,910 Data kepadatan Chlorella sp. dan Dunaliella sp. berdistribusi normal ( α = 0,178; 0,014) serta tidak homogen ( α = 0,000; 0,000). Selanjutnya, hasil uji F menunjukkan bahwa perlakuan mempengaruhi  kepadatan Chlorella sp. ( α = 0,000) dan Dunaliella sp. ( α = 0,000). Pengaruh perlakuan kemudian diuji lanjut menggunakan uji Games-Howell untuk mengukur signifikansinya. Baik kepadatan Chlorella sp.  maupun Dunaliella sp.  pada perlakuan 1000 lux tidak berbeda nyata dengan perlakuan 3000 lux, tetapi berbeda nyata dari perlakuan 7000 lux. Intensitas cahaya yang berbeda secara signifikan dapat dikelompokkan menjadi intensitas cahaya rendah dan tinggi. Kepadatan Chlorella sp. dan Dunaliella sp. relatif lebih tinggi pada intensitas cahaya rendah daripada intensitas cahaya tinggi.  Kepadatan kedua fitoplankton berbeda secara signifikan pada kedua kelompok intensitas.
Hasil uji F menunjukkan bahwa waktu berpengaruh terhadap kepadatan Chlorella sp. (α = 0,000). Selanjutnya, berdasarkan hasil  uji lanjut Games-Howell tampak bahwa berdasarkan waktu pengamatan,  kepadatan Chlorella sp. dapat dikelompokkan secara nyata pada waktu pengamatan awal, tengah, dan akhir. Kepadatan  tertinggi secara berurutan terdapat pada waktu pengamatan tengah, waktu pengamatan akhir, dan waktu pengamatan awal. Hasil  uji lanjut Games-Howell  menunjukkan tidak  adanya  perbedaan signifikan antarwaktu terhadap kepadatan Dunaliella sp. Nutrien yang diukur selama kegiatan kultur mengalami fluktuasi,  seperti pada Tabel 2. Konsentrasi ortofosfat dan nitrit pada semua
0 1 2 3 4 5 H0 H3 H6 H9 H0 H3 H6 H9 H0 H3 H6 H9 1000 Lux 3000 Lux 7000 Lux K ep ad at an k ul tu r ( sel /m L) Waktu pengamatan (hari ke-) Chlorella Dunaliella
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
perlakuan mengalami penurunan dari waktu ke waktu. Konsentrasi amonia pada perlakuan 1000 lux dan 3000 lux mengalami penurunan, namun naik di akhir waktu pengamatan pada perlakuan 7000 lux. Fluktuasi nitrat relatif sama pada perlakuan 1000 lux dan 3000 lux, namun berbeda pada perlakuan 7000 lux.
Terdapat keterkaitan yang erat antara konsentrasi nutrien dengan kepadatan Chlorella sp. Nutrien yang terdiri dari ortofosfat, amonia, nitrit, dan nitrat memberikan pengaruh secara simultan terhadap kepadatan Chlorella sp. (α = 0,000).  Secara terpisah,  nutrien yang memberikan pengaruh signifikan adalah ortofosfat  (α  =  0,000)  dan  nitrat  (α  =  0,001). Persamaan hubungan konsentrasi nutrien (X) dengan kepadatan Chlorella sp. (Y) adalah Y = -2,379 – 1,272 Ortofosfat + 12,984 Amonia + 6,934 Nitrit – 5,083 Nitrat. Hal tersebut tidak tampak pada Dunaliella sp. yang  memiliki keterkaitan relatif  renggang. Nutrien secara simultan tidak memberikan pengaruh terhadap kepadatan Dunaliella sp. (α = 0,118), tetapi secara satuan nitrat memberikan pengaruh signifikan terhadap kepadatan
Dunaliella sp. (α = 0,015). Persamaan hubungan konsentrasi nutrien (X) dengan kepadatan Dunaliella sp. (Y) adalah Y = -0,302  –  0,008 Ortofosfat + 2,982 Amonia + 1,106 Nitrit – 1,365 Nitrat.
Nilai negatif dari  koefisien ortofosfat dan nitrat pada persamaan kedua jenis fitoplankton menunjukkan bahwa kedua nutrien memiliki hubungan linear negatif dengan kepadatan fitoplankton. Dengan kata lain, penurunan konsentrasi nutrien diikuti oleh  kenaikan kepadatan fitoplankton.
Hasil analisis hubungan konsentrasi nutrien dengan kepadatan Chlorella sp. dan Dunaliella sp. Juga ditunjukkan dari nilai korelasi Pearson (r)  (Tabel  3). Terlihat  adanya hubungan yang signifikan antara konsentrasi ortofosfat dengan kepadatan Chlorella sp.  (α  =  0,00)  dan konsentrasi nitrat dengan kepadatan Dunaliella sp. (α = 0,04).
3.2. Pembahasan Cahaya dapat berupa partikel dan gelombang. Cahaya sebagai partikel terdiri dari foton-foton yang mengandung energi, yang jika diterima oleh permukaan dengan luas tertentu dapat
Tabel 2. Nilai rata-rata nutrien selama pengamatan.
Perlakuan Ortofosfat  Amonia  Nitrit  Nitrat mg.L -1 mg.L -1 mg.L -1 mg.L -1
1000 Lux Awal 2.358 0.210 1.071  0.489 Tengah 1.494 0.186 1.034  0.456 Akhir 1.335 0.199 1.004  0.671 3000 Lux Awal 2.404 0.195 1.025  0.548 Tengah 1.678 0.193 1.001  0.361 Akhir 1.296 0.168 0.955  0.612 7000 Lux Awal 2.700 0.133 1.034  0.582 Tengah 1.465 0.163 1.063  0.481 Akhir 1.389 0.170 0.990  0.404 Tabel 3. Hubungan konsentrasi nutrien dengan kepadatan fitoplankton. Fitoplankton Korelasi Ortofosfat Amonia Nitrit Nitrat Chlorella sp. r − 0,54 0,19 − 0,14 − 0,37 α 0 0,34 − 0,49 0,6 Dunaliella sp. r − 0,04 0,18 0,07 − 0,39 α 0,86 0,36 0,72 0,04
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
disebut sebagai intensitas cahaya. Semakin banyak foton yang diterima suatu luasan permukaan,  semakin tinggi  intensitas cahaya yang terukur (Metsoviti et al. 2019). Intensitas cahaya memengaruhi kelangsungan hidup fitoplankton  karena fitoplankton melakukan fotosintesis  yang mengubah energi cahaya menjadi energi kimia. Fotosintesis berlangsung di membran tilakoid di dalam organel sel yang disebut kloroplas (Wimalasekera 2019). Foton yang diterima oleh kloroplas digunakan untuk mereduksi nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADP + ) menjadi nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH)  dan memproduksi adenosine triphosphate (ATP) pada reaksi terang. Proses pemecahan molekul air pada reaksi terang melepaskan oksigen (O 2 ). NADPH dan ATP selanjutnya digunakan untuk mengubah CO 2 menjadi karbohidrat pada reaksi gelap. Karbohidrat hasil reaksi gelap dimanfaatkan sel fitoplankton sebagai sumber energi untuk tumbuh dan menambah biomassa (Wimalasekera 2019).
Cahaya sebagai parameter penting yang dibutuhkan dalam fotosintesis fitoplankton memerlukan manajemen untuk memaksimalkan produksi udang. Suhu, pH, dan salinitas media kultur dipertahankan dalam kondisi optimal selama pengamatan agar kultur Chlorella sp. dan Dunaliella sp. dapat hidup. Hal ini dikarenakan komposisi dan proses biokimia dalam sel fitoplankton dipengaruhi oleh ketiga parameter tersebut.
Suhu yang terukur selama pengamatan adalah sebesar  25,8±0,4  °C. Hal ini menunjukkan bahwa suhu kultur optimal  (Ras et al. 2013). Chlorella sp. tumbuh dengan baik pada salinitas 25─30 ppt (Singh and Singh 2015), sedangkan Dunaliella pada salinitas 25─35 ppt ( Setiasih et al. 2020). Media kultur memiliki pH sebesar 8,1±0,00 dan salinitas sebesar 28 ppt. Kedua fitoplankton tumbuh dengan baik pada pH basa, yang merupakan rentang pH dan salinitas optimal bagi keduanya (Gong et al. 2014; Kusdarwati et al. 2019).
Kurva pertumbuhan fitoplankton secara umum terdiri dari lima fase, yaitu fase lag, fase eksponensial, fase penurunan laju pertumbuhan relatif, fase stasioner, dan fase kematian (Fatemeh dan Mohsen 2016). Fase yang nampak pada kurva pertumbuhan dapat berbeda berdasarkan jeda waktu pengamatan. Fase pertumbuhan yang nampak selama pengamatan adalah fase lag, eksponensial, dan kematian.
Sejumlah kecil kenaikan dan penurunan kepadatan sel dapat teramati pada fase lag. Hal ini disebabkan karena sel sedang beradaptasi. Fase eksponensial ditandai dengan peningkatan jumlah sel sebagai fungsi dari waktu t. Peningkatan jumlah sel dapat digambarkan oleh fungsi logaritma: N t = N 0 × e kt dengan N t dan N 0 mewakili kepadatan sel pada waktu t dan 0, serta k mewakili laju pertumbuhan. Fase kematian menunjukkan  kepadatan  sel yang menurun drastis. Hal ini disebabkan laju kematian sel lebih tinggi daripada laju pertumbuhan.
Kepadatan  sel Chlorella sp. pada semua perlakuan mengalami kenaikan mulai dari hari ke-0 hingga hari ke-4.  Kepadatan  tertinggi didapatkan pada perlakuan pada semua perlakuan tercatat pada hari ke-4. Kepadatan sel mengalami penurunan pada hari ke-5 dan mengalami sejumlah kecil kenaikan pada hari selanjutnya sebelum laju kematian melebihi laju pertumbuhan sel. Kepadatan sel Dunaliella sp. tertinggi tercatat di  hari ke-6  pada  perlakuan intensitas cahaya 1000 lux.  Kepadatan  sel Dunaliella sp. pada hari berikutnya mengalami penurunan. Hal ini menandakan sel mengalami fase kematian.
Fase eksponensial merupakan fase pertumbuhan terproduktif. Waktu yang dibutuhkan sel fitoplankton untuk melipatgandakan jumlahnya disebut doubling time. Semakin  tinggi laju pertumbuhan, makin pendek  waktu yang dibutuhkan sel untuk melipatgandakan jumlahnya. Doubling time memiliki hubungan erat dengan konsentrasi nutrien dan laju pertumbuhan sel (Hossain dan Mahlia 2019).
Laju pertumbuhan sel Chlorella sp. pada penelitian berkisar 0,226 ─ 0,257/hari dan
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
doubling time berkisar 2,697 ─ 3,072 hari. Penelitian yang dilakukan (Satriaji et al. 2016) menunjukkan laju pertumbuhan sel Chlorella sp. pada intensitas cahaya 4000 lux dan 5000 lux secara berurutan sebesar 0,25/hari dan 0,26/hari. Laju pertumbuhan sel Dunaliella sp. pada penelitian berkisar 0,144 ─ 0,363/hari dan doubling time berkisar 4,819 ─ 1,910 hari. Menurut  Kawaroe et al. (2009) , rata-rata laju pertumbuhan sel Dunaliella sp. pada intensitas cahaya 2000 lux sebesar 0,329/hari.
Ketiga perlakuan intensitas cahaya memberikan pengaruh yang signifikan terhadap peningkatan kepadatan  sel kedua jenis fitoplankton. Rata-rata kepadatan sel Chlorella sp. tertinggi didapatkan pada intensitas cahaya 1000 lux yang berbeda secara signifikan dengan kepadatan terendah pada intensitas cahaya 7000 lux. Penelitian yang dilakukan oleh Lu et al. (2013)  menyatakan bahwa Chlorella sp. yang dikultur pada intensitas cahaya 3000 lux memiliki  kepadatan  terendah di  antara sel Chlorella sp. yang dikultur pada intensitas cahaya 600 ─2000  lux. Hasil yang sama juga ditunjukkan oleh penelitian yang dilakukan oleh Rai et al. (2015)  yang menunjukkan bahwa kepadatan Chlorella sp. yang dikultur pada intensitas cahaya 3300 lux memiliki kepadatan terendah dibandingkan kepadatan Chlorella sp. pada intensitas cahaya 2100 ─2700 lux. Rata-rata  kepadatan  sel Dunaliella sp. tertinggi berada pada intensitas cahaya 1000 lux dan berbeda secara signifikan dengan kepadatan pada intensitas cahaya 7000 lux. Rendahnya kepadatan  sel Dunaliella sp. pada intensitas cahaya tinggi juga ditunjukkan oleh penelitian Daiya et al. (2014).  Hasil penelitian  tersebut menunjukkan bahwa kepadatan  sel Dunaliella sp. pada intensitas 3500 lux relatif lebih rendah daripada  kepadatan  sel Dunaliella sp.  di intensitas cahaya 2500 lux. Rendahnya  kepadatan  sel Chlorella sp. dan Dunaliella sp. pada intensitas cahaya 3000 lux dan 7000 lux dapat disebabkan oleh penurunan laju fotosintesis  akibat efek penghambatan cahaya atau photoinhibition (Metsoviti et al.
2019) . . Laju fotosintesis dipengaruhi oleh intensitas cahaya yang diterima membran tilakoid melalui pigmen yang disebut klorofil. Laju fotosintesis akan meningkat secara proporsional dengan peningkatan intensitas cahaya. Namun, intensitas cahaya yang terlalu tinggi dapat merusak klorofil sehingga laju fotosintesis melambat.
Kandungan klorofil Chlorella sp. dan Dunaliella sp.  dipengaruhi oleh  intensitas cahaya  (Seepratoomrosh et al. 2016;  Pisal dan Lele 2005). Berdasarkan Seepratoomrosh et al. (2016),  kandungan klorofil Chlorella sp. berkurang pada intensitas cahaya lebih dari 3700 lux. Sementara,  Pisal dan Lele (2005) menyatakan bahwa kandungan klorofil Dunaliella sp. berkurang pada intensitas cahaya lebih dari 2300 lux.
Di samping itu, intensitas cahaya tinggi juga dapat menghambat pertumbuhan sel fitoplankton dengan mengubah morfologi sel fitoplankton, seperti ukuran sel serta rasio antara luas permukaan dan  volume sel fitoplankton. Tingkat penyerapan nutrien oleh sel dipengaruhi oleh dua parameter morfologi tersebut (Finkel et al. 2010).  Sebagaimana yang dikekmukakan oleh  Charalampous et al. (2018) , bahwa sel fitoplankton mengalami peningkatan ukuran dan penurunan rasio luas permukaan dengan volume sel pada intensitas cahaya lebih dari 5328 lux. Hal tersebut menyebabkan terjadinya penurunan laju penyerapan nutrien oleh sel fitoplankton.
Nutrien merupakan senyawa anorganik yang dibutuhkan fitoplankton bagi kelangsungan hidupnya.  Fosfor dan nitrogen merupakan nutrien utama yang dibutuhkan fitoplankton. Fosfor dibutuhkan fitoplankton untuk pertumbuhan dan pembelahan sel, dan setidaknya harus tersedia sebanyak 0,03–0,06% dari total media agar pertumbuhan sel fitoplankton terdukung. Ortofosfat (PO 4 3− ) merupakan bentuk fosfor  terlarut  yang dapat secara langsung disintesis oleh fitoplankton.
Hasil pengukuran konsentrasi ortofosfat dalam penelitian  menunjukkan bahwa konsentrasi ortofosfat selama waktu penumbuhan fitoplankton sebesar 1,276–2,734
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
mg/L. Menurut Rumanti et al. (2014) , konsentrasi fosfat yang optimal bagi fitoplankton berkisar 0,27–5,51 mg/L. Fosfat akan menjadi faktor pembatas pertumbuhan fitoplankton pada konsentrasi di bawah 0,02 mg/L.
Nitrogen merupakan nutrien makro bagi fitoplankton selain fosfor.  Nitrogen dimanfaatkan fitoplankton dalam sintesis protein, lipid, dan karbohidrat. Fitoplankton memanfaatkan nitrogen dalam bentuk amonia (NH 4 + ), nitrit (NO 2 − ), dan nitrat (NO 3 − ) (Yaakob et al. 2021). Konsentrasi amonia media selama proses kultur sebesar 0,132 ─ 0,217 mg/L. Konsentrasi amonia tidak boleh melebihi 25 µM atau 0,89 mg/L  karena akan bersifat toksik bagi fitoplankton. Konsentrasi nitrit media selama kultur sebesar 0,954 ─1,074  mg/L  dan konsentrasi  nitrat  sebesar  0,356─0,676  mg/L. Konsentrasi nitrat pada media penelitian berada pada rentang konsentrasi nitrat perairan pesisir dengan  kepadatan  fitoplankton tinggi tanpa adanya blooming spesies tertentu, yaitu sebesar 0,2─0,7 mg/L (Paiki dan Kalor 2017) . Berdasarkan fakta bahwa kultur fitoplankton memanfaatkan nutrien selama penumbuhannya. Hal tersebut ditunjukkan melalui hasil uji korelasi Pearson yang mencerminkan adanya hubungan antara konsentrasi ortofosfat, amonia, nitrit, dan nitrat dengan kepadatan  sel fitoplankton. Hubungan yang signifikan ditunjukkan oleh hubungan antara konsentrasi ortofosfat dengan kepadatan  sel Chlorella sp. dan hubungan antara konsentrasi nitrat dengan kepadatan  sel Dunaliella sp.  Korelasi yang bernilai negatif menunjukkan bahwa konsentrasi ortofosfat mengalami penurunan saat terjadi peningkatan  kepadatan  sel Chlorella sp. dan konsentrasi nitrat mengalami penurunan saat terjadi peningkatan kepadatan sel Dunaliella sp. Hasil uji regresi linier berganda juga menunjukkan terdapat hubungan antara konsentrasi nutrien dengan kepadatan fitoplankton. Konsentrasi ortofosfat dan nitrat memberikan pengaruh signifikan terhadap kepadatan Chlorella sp. Adapun konsentrasi
nitrat memberikan pengaruh signifikan terhadap kepadatan Dunaliella sp. Koefisien kedua hubungan ini bernilai negatif. Hal ini menunjukkan bahwa kedua hubungan bersifat linear negatif.
Ortofosfat dan nitrat merupakan  nutrien utama yang memengaruhi pertumbuhan fitoplankton.  Fosfor diperlukan dalam proses produksi lipid, pembentukan asam lemak, dan metabolisme sel. Fosfor menjadi senyawa esensial dalam produksi fosfolipid, DNA, RNA, dan ATP sel fitoplankton. Sementara,  nitrogen dimanfaatkan fitoplankton dalam sintesis protein, lipid, dan karbohidrat (Yaakob et al. 2021). Nitrogen dalam bentuk nitrat lebih banyak dimanfaatkan oleh fitoplankton dibandingkan amonia. Hal ini dikarenakan amonia bersifat kurang stabil terhadap perubahan pH (Yaakob et al. 2021). Fitoplankton yang ditumbuhkan dalam media yang mengandung nitrat dan nitrit menunjukkan kenaikan biomassa yang lebih tinggi dibandingkan dalam media yang hanya mengandung nitrit. Hal ini dapat disebabkan kandungan nitrogen pada nitrit tidak mencukupi karena tidak stabil selama waktu penumbuhan fitoplankton (Li et al. 2020). Hasil penelitian menunjukkan bahwa perbedaan intensitas cahaya memengaruhi kepadatan  fitoplankton secara nyata. Besar intensitas cahaya dapat diatur melalui peredupan menggunakan peranti, seperti plastik UV  (Jaziri et al . 2018). Pengaturan intensitas cahaya ini diharapkan dapat mendukung pertumbuhan fitoplankton agar mencapai kepadatan yang dibutuhkan dan memaksimalkan produksi udang.
Fitoplankton memiliki peran penting dalam kegiatan produksi udang dan dapat memengaruhi keberhasilan produksi udang dalam tambak. Hal ini dikarenakan fitoplankton memengaruhi tingkat kelulushidupan udang pasca larva (Widiatmaka et al .  2016). Fitoplankton dari jenis Chlorella  sp. dan Dunaliella  sp. merupakan sumber senyawa esensial, seperti asam amino, vitamin, mineral, karbohidrat, serat, dan antioksidan (Sukri et al .
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
2016). Udang yang mengonsumsi dua jenis fitoplankton ini mengalami peningkatan daya tahan tubuh dan laju pertumbuhan, memiliki aktivitas enzim pencernaan dan komposisi asam lemak yang baik, serta mampu menoleransi keadaan hipoksia dan kandungan amonia air (Pakravan et al . 2018; Félix et al . 2017).
4. Kesimpulan
Perbedaan intensitas cahaya memengaruhi kepadatan Chlorella sp. dan Dunaliella sp. dengan kepadatan tertinggi didapatkan pada intensitas cahaya 1000 lux, masing-masing sebesar 4,8 × 10 6 sel/mL dan 1,33 × 10 6 sel/mL, sedangkan kepadatan terendah didapatkan pada intensitas cahaya 3000 lux untuk Chlorella sp. sebesar 3,35 × 10 6 sel/mL, serta pada 3000 lux untuk Dunaliella sp., sebesar 0,77 × 10 6 sel/mL.
Daftar pustaka Andreotti V, Alessandro S, Anuta C, Francesca M, Joan G. 2019. Growth of Tetraselmis suecica and Dunaliella tertiolecta in aquaculture wastewater: numerical simulation with the bio_algae model. Wat. Air and Soil Poll . 230(3):60. DOI:10.1007/s11270-019-4122-0.
Budiardi T, Widyaya I, Wahjuningrum D. 2007. Hubungan komunitas fitoplankton dengan produktivitas udang vaname ( Litopenaeus vannamei ) di tambak biocrete. JAI. 6(2):119– 25. DOI:10.19027/jai.6.119-125.
Cebula TA, Henrikson TE, Hartman PE, Biggley WH. 1995. Reversion profiles of cool white fluorescent light compared with far ultraviolet light: homologies and differences. Photochem. Photobiol. 61(4):353–359. DOI:10.1111/j.1751-1097.1995.tb08622.x.
Charalampous E, Matthiessen B, Sommer U. 2018. Light effects on phytoplankton morphometric traits influence nutrient utilization ability. J. Plankton Res. 40(5):568–579. DOI:10.1093/plankt/fby037.
Daiya A, Singh GP, Saini RK. 2014. A comparative study on growth of Spirulina
platensis and Dunaliella salina interacted by different photoperiod and temperatures. J. Phytol. Res. 27(1&2):25–31.
Drezner Z, Turel O, Zerom D. 2010. A modified kolmogorov–smirnov test for normality. Commun. Stat - Simul. Comput. 39(4):693– 704. DOI:10.1080/03610911003615816.
Fatemeh L, Mohsen D. 2016. Effects of environmental factors on the growth, optical density and biomass of the green algae Chlorella vulgaris in outdoor conditions. J. Appl. Sci. and Environ. Manage. 20(1):133– 139. DOI:10.4314/jasem.v20i1.16.
Fauziah A, Bengen DG, Kawaroe M, Effendi H, Krisanti M. 2019. Hubungan antara ketersediaan cahaya matahari dan konsentrasi pigmen fotosintetik di perairan selat bali. JITKT. 11(1):37–48. DOI:10.29244/jitkt.v11i1.23108.
Félix DM, Elías JAL, Córdova AIC, Córdova LRM, González AL, Jacinto EC, Aldaz NH, Mendoza FC, Zazueta MGB. 2017. Survival of Litopenaeus vannamei shrimp fed on diets supplemented with Dunaliella sp. is improved after challenges by Vibrio parahaemolyticus . J. Invertebr. Pathol .
148:118–123. DOI:10.1016/j.jip.2017.06.003
Finkel ZV, Beardall J, Flynn KJ, Quigg A, Rees TAV, Raven JA. 2010. Phytoplankton in a changing world: cell size and elemental stoichiometry. J. Plankton Res. 32(1):119– 137. DOI:10.1093/plankt/fbp098.
Gao K, Li G, Helbling EW, Villafañe VE. 2007. Variability of uvr effects on photosynthesis of summer phytoplankton assemblages from a tropical coastal area of the South China Sea. Photochem. Photobiol. 83(4):802–9. DOI:10.1111/j.1751-1097.2007.00154.x.
Gómez MP, Romeral JG, Martorell JC, Aroca AS. 2017. Direct spectrophotometric method to determine cell density of Isochrysis galbana in serial batch cultures from a larger scale fed-batch culture in exponential phase.
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
Di dalam: Martorell JC, editor. Proceedings of MOL2NET 2017, International Conference on Multidisciplinary Sciences, 3 rd Edition; 2017 Nov 27; Valencia, Spanyol.
Spanyol: hlm 35–43.  DOI:10.3390/mol2net- 03-04632.
Gong Q, Feng Y, Kang L, Luo M, Yang Y. 2014. Effects of light and ph on cell density of Chlorella vulgaris . Energy Procedia. 61:2012–2015. DOI:10.1016/j.egypro.2014.12.064.
Hossain N, Mahlia TMI. 2019. Progress in physicochemical parameters of microalgae cultivation for biofuel production. Crit. Rev. Biotechnol. 39(6):835–859. DOI:10.1080/07388551.2019.1624945.
Jaziri AA, Guntur G, Setiawan W, Prihanto AA, Kurniawan A. 2018. Preliminary design of a low-cost greenhouse for salt production in Indonesia. IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci. 137:012054. DOI:10.1088/1755- 1315/137/1/012054.
Kawaroe M, Prartono T, Sunuddin A, Sari DW, Augustine D. 2009. Laju pertumbuhan spesifik Chlorella sp. dan Dunaliella sp. berdasarkan perbedaan nutrien dan fotoperiode. JJIPPI . 16(1):73–77.
Kumar D , Santhanam P, Jayalakshmi T, Nandakumar R, Ananth S, Devi AS, Prasath BB. 2015. Excessive nutrients and heavy metals removal from diverse wastewaters using marine microalga Chlorella marina (Butcher). Indian J. Mar. Sci. 44(1):97–103.
Kusdarwati R, Akhyar M, Rahardja B. 2019. Pengaruh penambahan vitamin b pada media blotong 12 kering terhadap pertumbuhan populasi Dunaliella salina . JIPK . 3(1):73– 77. DOI:10.20473/jipk.v3i1.11628.
Lee HB, Katz GS, Restori AF. 2010. A monte carlo study of seven homogeneity of variance tests.  J. Math. Stat. 6(3):359–366.
Li S, Zheng X, Chen Y, Song C, Lei Z, Zhang Z. 2020. Nitrite removal with potential value-
added ingredients accumulation via Chlorella sp. L38. Bioresour. Technol. 313. DOI:10.1016/j.biortech.2020.123743.
Lu BL, Li MX, Qi L. 2013. The effect of light on the growth and product accumulation of Chlorella.
Adv. Mat. Res. 724– 725(2013):323–329.
DOI:10.4028/www.scientific.net/AMR.724- 725.323.
Metsoviti MN, Papapolymerou G, Karapanagiotidis IT, Katsoulas N. 2019. Effect of light intensity and quality on growth rate and composition of Chlorella vulgaris . Plants. 9(1):1–17. DOI:10.3390/plants9010031.
Pachiappan P, Prasath BB, Perumal S, Devi AS, Kumar SD. 2015. Isolation and culture of microalgae. Di dalam: Perumal P editor. Advances in Marine and Brackishwater Aquaculture. New Delhi: Springer India. hlm 1–15. DOI:10.1007/978-81-322-2271-2_1.
Paiki K, Kalor J. 2017. Distribusi nitrat dan fosfat terhadap kepadatan  fitoplankton di peraiaran pesisir Yapen Timur. J. Fish. Mar. Sci. 1(2):63–71.
Pakravan S, Akbarzadeh A, Sajjadi MM, Hajimoradloo A, Noori F. 2018. Chlorella vulgaris meal improved growth performance, digestive enzyme activities, fatty acid composition and tolerance of hypoxia and ammonia stress in juvenile Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei . Aquac. Nutr. 24(1):594–604. DOI:10.1111/anu.12594.
Pisal D, Lele S. 2005. Carotenoid production from microalga, Dunaliella salina . Indian J Biotechnol. 4:476–473.
Provasoli L, McLaughin JJA, Droop MR. 1957. The development of artificial media for marine algae. Archiv. Microbiol. 25:392– 428. DOI: 10.1007/BF00446694
Rai M, Gautom T, Sharma N. 2015. Effect of salinity, ph, light intensity on growth and lipid production of microalgae for bioenergy
Masitoh et al . Habitus Aquatica : Journal of Aquatic Resources and Fisheries Management 3(1):35–45
application. Online J.  Biol.  Sci. 15(4):260– 267. DOI:10.3844/ojbsci.2015.260.267.
Raja R, Shanmugam H, Ganesan V, Carvalho IS. 2014. Biomass from microalgae: an overview. Oceanography. 2(1):118–124. DOI:10.4172/2332-2632.1000118.
Ras M, Steyer J, Bernard O. 2013. Temperature effect on microalgae: a crucial factor for outdoor production. Rev. Environ. Sci. Biotechnol. 12(2):153–164. DOI:10.1007/s11157-013-9310-6.
Rumanti M, Rudiyanti S, Nitisupardjo M. 2014. Hubungan antara kandungan nitrat dan fosfat dengan  kepadatan  fitoplankton di sungai bremi Kabupaten Pekalongan. MAQUARES . 3(1):168–176. DOI:10.14710/marj.v3i1.4434.
Salmaso N, Luigi NL, Judit P. 2015. Functional classifications and their application in phytoplankton ecology. Freshw. Biol. 60(4):603–619. DOI:10.1111/fwb.12520.
Satriaji D, Zainuri M, Widowati I. 2016. Cultivated in different culture media and light intensity. J. Teknol. 78(4–2):27–31.
Seepratoomrosh J, Pokethitiyook P, Meetam M, Yokthongwattana K, Yuan W,  Pugkaew W, Kangvansaichol K. 2016. The effect of light stress and other culture conditions on photoinhibition and growth of Dunaliella tertiolecta . Appl. Biochem. Biotechnol. 178(2):396–407. DOI:10.1007/s12010-015- 1882-x.
Setiasih I, Sabdono A, Pramesti R. 2020. Pengaruh salinitas terhadap pertumbuhan dan aktivitas antioksidan Dunaliella salina (Chlorophyceae: Dunaliellaceae). J. Mar. Res. 9(2):181–185. DOI:10.14710/jmr.v9i2.27028.
Singh S, Singh P. 2015. Effect of temperature and light on the growth of algae species: A review. Renew. Sust. Energ. Rev. 50(2015):431–444.
DOI:10.1016/j.rser.2015.05.024.
Sukri SM, Saad CR, Kamarudin MS, Yasin I. 2016. Effect of different levels of Chlorella meal on growth and survival of freshwater prawns Macrobrachium rosenbergii juvenile. Songklanakarin J. Sci. Technol . . 38(6):641– 644.
Widiatmaka W, Ambarwulan W, Setiawan Y, Purwanto MYJ, Taryono T, Effendi H. 2016. Land use planning for brackish water shrimp ponds in the north coast of Tuban, Indonesia. Indones. J. Geogr. 4(2):194–211. DOI:10.22146/ijg.9268.
Wimalasekera R. 2019. Effect of light intensity on photosynthesis. Di dalam Ahmad P,   Ahanger MA, Alyemeni MN, Alam P. Photosynthesis, Productivity and Environmental Stress. 1st edn. Wiley. hlm 65–73. DOI:10.1002/9781119501800.ch4.
Yaakob M, Mohamed RMSR, Al-Gheethi A, Gokare RA, Ambati RR. 2021.  Influence of nitrogen and phosphorus on microalgal growth, biomass, lipid, and fatty acid production: an overview. Cells. 10(2):393– 412. DOI:10.3390/cells10020393.