@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk

## EKSTRAKSI BAKTERI ASAL EKTOMIKORIZA SEBAGAI AGEN ANTAGONIS PENYAKIT TANAMAN FUSARIUM

## (Extraction of Ektomycorrizae-Based Bacteria as an Antagonist Agent of Fusarium Disease of Plant)
IG. SEPTRIALDY SALEDA MALIN 1 , NUNANG LAMEK MAY 1  , MUTAKIM 1
Jurusan Kehutanan, Fakultas Kehutanan Universitas Papua Manokwari, Papua Barat, 98314. Tlp/Fax: +62986211065.
 Penulis Korespondensi: Email: nunangmay@gmail.com Diterima: 20 Feb 2020 | Disetujui:15 Mar 2020
Abstrak. Ketidakseimbangan  interaksi  antara  tanaman  dan  komponen  biotik  dan  abiotik  merupakan salah satu sumber penyakit. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mendapatkan jumlah bakteri dari ekstraksi Scleroderma citrinum yang menggambarkan morfologi bakteri dan mengamati respon bakteri potensial  dalam  melawan  agen  antagonis  penyakit Fusarium sp.  Hasil  penelitian  mendapatkan sebanyak 7 jenis bakteri S. citrinum ectomycorrhiza yang mempunyai kemampuan menangkal berbagai penyakit dari Fusarium sp. Ke 7 jenis bakteri S. citrinum memiliki tampilan morfologi yang berbeda. Morfologi  bakteri  dapat  digambarkan  yang  didasarkan  pada  bentuk,  sudut,  warna,  dan  permukaan. Hasil  tes  antagonis  dari  isolasi  bakteri  Scl  7  merupakan  pendugaan  dan  mempunyai  potensi  untuk menghalau Fusarium sp., pathogen, yang mana ini dapat dilihat dari tingginya persentase inhibisi yakni 41,11%. Dari penelitian ini, teramati bahwa tidak ada exploitasi nyata oleh bakteri S. citrinum terhadap Fusarium sp. Sehingga dengan demikian, bakteri S. citrinum diduga memiliki karakteristik antibiosis dan adanya peran persaingan (pesaing nutrisi).
Kata kunci: ectomycorrhiza, S. citrinum , fusarium sp, antagonis, kontrol biologi
Abstract. Unbalanced interaction between plant and biotic or abiotic components is one of sources to accelerate the presence of disease. The purpose of this study was to obtain an amount of bacteria from Scleroderma citrinum extraction which was describing bacteria morphology, and observed a response of  the  potential  bacteria  S.  citrinum  as  antagonists  against  the  disease  of  Fusarium  sp.  The  results obtained 7 species bacteria from S. citrinum ectomycorrhiza wich had ability to inhibition of different Fusarium  sp.,  diseases.  In  addition,  the  7  types  of  bacteria  S.  citrinum  had  different  morphology. Bacterial morphology can be described based on their shapes, edges, colors, and surfaces. The result of antagonistic test of bacterial isolate Scl 7 was suspected and had the potential to inhibit Fusarium sp.,  pathogen,  in  which  it  can  be  seen  from  the  highest  percentage  from  percentage  of  inhibition  of 41.11%. From the  study, it has been observed that  no visible exploitation by bacteria S. citrinum as antagonist  against  Fusarium  sp.  Therefore,  bacteria  S.  citrinum  was  suspected  to  contain  antibiosis and competition (nutrient competitor) characteristic.
Keywords: ectomycorrhiza, S. citrinum, fusarium sp, antagonist, biological control
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk

## PENDAHULUAN
Kawasan  Taman  Wisata  Alam  (TWA) Gunung  Meja  merupakan  salah  satu  kawasan konservasi  dengan  fungsi  hidrologis  yang berperan sebagai catchment area, TWA Gunung Meja  juga  memenuhi  kebutuhan  air  sebagian masyarakat  kota  Manokwari.  Kawasan  yang berada pada ketinggian antara 16-210 meter dpl, dengan  topografi  lapangan  bervariasi  dari  datar hingga  bergelombang  ringan  ke  arah  timur dan bergelombang  berat  dari  timur  ke  arah  barat dengan puncak tertinggi (Puncak Bonay) ± 210 meter  dpl,  kawasan  TWA  Gunung  Meja termasuk  wilayah  dengan  tipe  iklim  A  (Hutan hujan tropika basah).
Tipe iklim  A ini dicirikan dengan tingginya curah hujan tahunan yang terjadi mencapai rata- rata 2.084,20 mm/tahun atau 173,68 mm/bulan, dimana ratarata kelembaban udara pertahunnya adalah 83,52% dengan kelembaban maksimum 87%  dan  kelembaban  minimum  80%,  dimana intensitas  cahaya  matahari  mencapai  57,87 %/tahun,  tempertur  udaraminimum23,51  °C dan  maksimum  31,87  °C.  Kawasan  TWA Gunung  Meja  memiliki  ±  30  mata  air  berupa gua-gua  dan  mata  air  yang  tersebar  di  dalam dan  sekitar  kawasan.  Secara  lithostratigarfi, kawasan  ini  termasuk  dalam  strata  Formasi Manokwari  ( formasi  befoor )  yang  terdiri  dari batu  gamping  terumbu,  sedikit  biomikrit, kasidurit dan kalkarenit mengandung ganggang dan foraminitera.
TWA  Gunung  Meja  didominasi  oleh  jenis- jenis: Pometia coreacea , Pimelodendron amboinicum , Pometia  pinnata , Palaquium amboinensis , Intsia bijuga , Koordersiodendron pinnatum , Antiaris  toxycarya , Pterygota horsfieldia , Sterculia parkinsonii dan Spathiostemon  javensis .  TWA  Gunung  Meja juga  merupakan  habitat  yang  potensial  bagi kehidupan  satwa  liar.  Pada  kawasan  ini  dapat dijumpai  15  jenis  dari  6  famili  mamalia,  35 jenis  burung  (aves)  dari  20  famili,  20  jenis
herpetofauna  (7  kadal,  3  ampibia,  9  jenis  ular dan 1 jenis kura-kura).
Semangun  (2001),  menyatakan  interaksi antara  tumbuhan  hutan  dan  komponen lingkungan  selalu  terjadi  pada  tiap  bentuk ekosistem  hutan.  Ketidakseimbangan  interaksi antara  tumbuhan  dan  unsur  komponen  lainnya termasuk  komponen  biotik  atau  abiotik  adalah sebagai penyebab penyakit. Penyakit tumbuhan merupakan proses interaksi yang berjalan terus menerus,  akibatnya  juga  proses  fisiologis tumbuhan  berubah  hingga  pertumbuhan  dan perkembangannya mengarah ke arah yang tidak menguntungkan, atau bahkan sampai menyebabkan  kematian,  yang  di  mana komponen  penyebabnya  dikenal  sebagai patogen.
Hadi  (2001),  mikroorganisme  merupakan makhluk  hidup  yang  sangat  kecil  sehingga hanya  dapat  dilihat  menggunakan  mikroskop. Adapun  macammacam  mikroorganisme  yang meliputi  bakteri,  virus,  dan  jamur.  Jenis mikroorganisme  tertentu  dapat  menyebabkan kerusakan pada makanan dan juga beberapa di antaranya  dapat  menyebabkan  keracunan  pada makanan.  Mikroorganisme  ada  juga  yang menguntungkan  dan  dapat  digunakan  untuk mengubah  karakteristik  pada  makanan  dan untuk  memperpanjang  masa  simpan  produk- produk tertentu.
Hadi  (2001)  faktor  penekan  terhadap tumbuhan  tidak  bekerja  secara  sendiri-sendiri, baik  serangga,  fungi,  nematoda,  virus, mirkoplasma,  serta  manusia,  dan  hewan  yang membuat  luka  pada  batang  pohon  ataupun faktor  fisik  dan  kimia,  termasuk  lingkungan. Faktor-faktor  tersebut  mampu  mempengaruhi tumbuhan  sehingga  dapat  menyebabkan tumbuhan hutan tertekan atau terganggu dalam pertumbuhan  dan  perkembangannya  sehingga tumbuhan tersebut terserang penyakit. Adapaun tujuan  dilakukan  penelitian  ini,  adalah  untuk mendapatkan jumlah bakteri dari hasil ekstraksi Scleroderma citrinum , mendeskripsikan
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
morfologi  bakteri  asal S.  citrinum ,  dan mengamati  respons  bakteri  asal S.  citrinum yang  berpotensi  sebagai  antagonis  terhadap penyakit Fusarium sp.

## METODE PENELITIAN
Penelitian ini dilaksanakan pada
Laboratorium  Silvikultur  Fakultas  Kehutanan Universitas Papua selama 1 bulan yang dimulai dari  bulan  April  sampai  dengan  Mei  tahun 2018.

## Prosedur Penelitian

## Pengambilan Jamur di Lapangan
Pengambilan badan buah Ektomikoriza jenis Scleroderma  citrinum di  Taman  Wisata  Alam Gunung  Meja  Manokwari,  di  bawah  tegakan Intsia  bijuga dengan  banyaknya  jumlah  badan buah ektomkoriza yang diambil adalah 4 badan buah.

## Pembuatan Media Tanam
Media  yang  digunakan  pada  penelitian  ini terdiri  dari  2  media,  yaitu  media  PDA  ( Potato Dextrose  Agar )  yang  di  gunakan  untuk perbanyakan  cendawan  patogen Fusarium sp . , dan  uji  antagonis,  kemudian  media  NA ( Natrient  Agar )  yang  digunakan  untuk mengisolasi  bakteri  hasil  ekstraksi.  Pembuatan dan  komposisi  media  PDA  dan  juga  NA diuraikan sebagai berikut:
PDA ( Potato Dextrose Agar ) Alat-alat  yang  digunakan  dalam  pembuatan media  PDA  antara  lain aoutoclave , hot  plate , timbangan analitik, gelas ukur, gelas piala, labu erlenmeyer ,  spatula  dan  pisau,  sedangkan bahan-bahan  yang  digunakan  yaitu  kentang, agar-agar  bening,  gula,  aquades,  kapas,  dan aluminium  foil proses  pembuatan  media  PDA diuaraikan sebagai berikut :
a. Kentang,  gula  dan  agar-agar  ditimbang menggunakan  timbangan  analitik  sesuai kententuan  yang  telah  ditentukan  yaitu
kentang  sebanyak 200 gr, gula sebanyak 20 gr dan agar-agar sebanyak 15 gr.
b. Kentang  dipotong  berbentuk  dadu  atau ukuran lebih kecil.
c. Potongan  kentang  selanjutnya  dimasukan kedalam  gelas  piala  yang  telah  berisi aquades  sebanyak  1000  ml,  kemudian dimasak  menggunakan hot  plate hingga lunak  untuk  mendapatkan  sari  dari  kentang tersebut.
d. Sari  kentang  selanjutnya  dipanaskan  lagi, kemudian  gula  dituangkan  dan  diaduk hingga larut selanjutnya agar-agar dituangkan  dan  aduk  hingga  benarbenar larut.
e. Selanjutnya  larutan  tersebut  dituangkan  ke dalam  2  buah  labu erlenmeyer dengan takaran yang sama yaitu 500 ml.
f. Tutup  rapat  labu  erlenmeyer  dengan menggunakan kapas kemudian lapisi dengan aluminium foil .
g. Larutan  media  PDA  tersebut  selanjutnya disterilkan menggunakan aoutoclave dengan suhu  121 °C  dan  tekanan  1  atm  selama  15 menit.
NA ( Nutrient Agar )
Alat-alat  yang  digunakan  dalam  pembuatan media  NA  adalah autoclave , hot  palte , timbangan analitik, gelas ukur, gelas piala, labu erlenmeyer ,  dan  spatula.  Bahan-  bahan  yang digunakan adalah nutrient agar, aquades, kapas dan aluminium foil .  Proses  pembuatan  media NA diuraikan sebagai berikut :
a. Nutrient  agar  ditimbang  sebanyak  20  gr menggunakan  timbangan  analitik  dengan ketentuan  yang  sudah  ditentuksn  dan dilarutkan  dalam  500  ml  aquades,  setelah larut  sempurna  tambahkan  aquades  hingga tanda tera (1000 ml).
b. Selanjutnya  larutan  tersebut  dituangkan kedalam  2  buah  labu  erlenmeyer  dengan volume masing-masing sebanyak 500 ml.
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
c. Tutup  rapat  labu erlenmeyer dengan menggunakan kapas kemudian lapisi dengan aluminium foil . d. Larutan  media  PDA  tersebut  selanjutnya disterilkan menggunakan aoutoclave dengan suhu  121 °C  dan  tekanan  1  atm  selama  15 menit.

## Isolasi Bakteri
Pada tahap ini metode yang digunakan ialah metode  tuang. S.  citrinum dicuci  dibawah  air mengalir dengan menggunakan sabun ( sunlight ), setelah  di  bersihkan  kemudian ditiriskan.  Sterilisasi  jamur S.  citrinum dilakukan  di Laminar  air  flow  cabinet dengan menyemprotkan alkohol 70% pada badan buah
jamur, kemudian di cacah menggunakan scapel dan di masukan dalam botol yang sudah berisi air steril sebanyak 100 ml untuk di ekstrak dan di  kocok selama  5  menit.  Selanjutnya  ekstrak yang dihasilkan dibuat seri pengenceran hingga seri  tingkat  ke  4  dengan  mengambil  10  ml ekstrak  dan  di  masukan  ke dalam  botol  yang sudah  berisi  100  ml  air  steril.  Masing-masing seri  pengenceran diambil  sebanyak  1  ml kemudian  diteteskan  pada  media  NA  dengan membuat  4 titik  pada  cawan  petri  dengan pengulangan  sebanyak  3  kali.  Selanjutnya diinkubasi pada suhu ruangan 25 °C selama ± 3 hari untuk mendapatkan koloni bakteri.
Gambar 1 . Model pengenceran dari ekstrak jamur S. citrinum

## Perbanyakan Cendawan Patogen
Patogen yang digunakan dalam penelitian ini adalah Fusarium sp. Perbanyakan biakan murni dilakukan secara aseptik pada Laminar air flow cabinet ,  dengan  cara  membuat  lubang  ukuran 0,6 cm menggunakan cop bor pada cawan petri
yang  telah  terisi  media  PDA.  Selanjutnya miselium  cendawan  patogen  diambil  dengan cop bor sesuai ukuran lubang yang telah dibuat. Miselium  tersebut  selanjutnya  diinkubasi  pada suhu ruangan 25 °C selama ± 3 hari.
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
Gambar 2 . Model perbanyakan patogen Fusarium sp.
Pemurnian Bakteri Permurnian  bakteri  menggunakan  metode gores dimana bakteri yang telah didapatkan dari jamur S. citrinum kemudian pembuatan biakan murni  dari  bakteri-bakteri  tersebut  dilakukan secara
aseptik  pada laminar  air  flow cabinet dengan menggoreskan bakteri menggunakan jarum ose pada media NA dalam cawan petri, selanjutnya bakteri  tersebut  diinkubasi  pada  suhu  ruangan 25 °C selama ± 3 hari.
Gambar 3 . Pemurnian bakteri antagonis

## Pengujian Bakteri dengan Penyakit Tanaman (Uji Antagonis)
Uji antagonis bakteri pada penyakit tanaman dilakukan  secara in  vitro ,  dilakukan  untuk melihat respons dari bakteri asal jamur S.
citrinum terhadap  pertumbuhan  cendawan penyakit tanaman. Pengujian dilakukan menggunakan  metode  Varese  et  al. (1996) dalam May  (2011).  Cendawan  patogen ditumbuhkan pada cawan petri yang berukuran 9  cm  yang  berisi  media  PDA,  kemudian  di
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
ambil  koloni  bakteri  asal S.  citrinum dan ditempatkan pada cawan petri pada jarak 1 cm dari  bagian  terluar  dilingkari  mengelilingi cendawan patogen. Kemudian cawan petri
dieratkan  dengan  plastic wrap dan  diinkubasi dalam  keadaan  gelap  pada  suhu  25  °C  dengan batas  waktu  pengamatan  hingga  penuhnya cendawan patogen pada kontrol media PDA.
Gambar 4 . Model pengujian bakteri terhadap patogen Fusarium sp.

## Variabel Pengamatan
Adapun  variabel  pengamatan  dalam  penelitian ini, yaitu:
1.  Jumlah bakteri hasil ekstraksi S. citrinum,
2.  Penampakan  morfologi  bakteri  asal S. citrinum,
3.  Pertumbuhan  radial  miselium  cendawan Fusarium sp. yang diuji dengan bakteri asal jamur S. citrinum.
Pengamatan  dilakukan  dengan  pengukuran pertumbuhan  penyakit  tanaman  yang  diberi perlakuan  dengan  yang  tidak  diberi  perlakuan (kontrol).  Data  pengamatan  digunakan  untuk menghitung perkembangan radial miselium dan persen penghambatan bakteri terhadap penyakit tanaman.  Persen  penghambatan  dihitung dengan menggunakan rumus (May 2011) : Persen total pertumbuhan fungi
=
Persen  penghambatan  =  100%  -  persen  total pertumbuhah fungi
Rancanangan Penelitian dan Analisis Data Rancangan  yang  digunakan  dalam  uji antagonis  bakteri  asal  jamur S.  citrinum terhadap  cendawan Fusarium sp.  adalah Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  yang  terdiri dari 8 perlakuan dan ulangan sebanyak 3 (tiga) kali, sehingga diperoleh 24 variabel pengamatan. Perlakuan yang di berikan sebagai berikut:
a. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp . . (kontrol) b. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp . dan bakteri asal jamur S. citrinum isolat 1. (Scl 1).
c. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp . dan bakteri asal jamur S. citrinum isolat 2. (Scl 2).
d. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp . dan bakteri asal jamur S. citrinum isolat 3. (Scl 3).
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
e. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp . dan bakteri asal jamur S. citrinum isolat 4. (Scl 4).
f. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp. dan bakteri asal jamur S. citrinum isolat 5. (Scl 5).
g. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp . dan bakteri asal jamur S. citrinum isolat 6. (Scl 6).
h. Media  PDA  yang  ditanami  cendawan patogen Fusarium sp. dan bakteri asal jamur S. citrinum isolat 7. (Scl 7).
Model  matematis  rancangan  acak  lengkap (Mattjik 2002 dalam May 2011) sebagai berikut : Yij = μ + τi + εji Yij :  Respon penyakit Fusarium sp terhadap perlakuan Bakteri asal Scleroderma citrinum (1, 2, 3, 4, 5, 6, dan 7).
μ :  Nilai tengah pengamatan
τi :  Perlakuan pemberian bakteri asal S. citrinum (1, 2, 3, 4, 5, 6, dan 7). εji :  Tingkat kesalahan akibat perlakuan bakteri asal S. citrinum (1, 2, 3, 4, 5, 6, dan 7) dengan ulangan sebanyak 3 kali (i = 1;2;3;4;5;6;7;8) dan (j = 1;2;3)
Data  yang  diperoleh  selanjutnya  diolah menggunakan  perangkat  statistic  SPSS  16. Hasil  dari  olahan  tersebut  jika  terdapat pengaruh nyata selanjutnya dilakukan uji lanjut Duncan.  Hasil  penelitian  akan  ditampilkan dalam bentuk tabel dan gambar.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Jumlah Bakteri Hasil Ekstraksi Scleroderma citrinum Hasil  ekstraksi sporocarp bakteri  dari ektomikoriza ( S. citrinum ) pada hari ke 3 (tiga) diperoleh  bakteri  sebanyak  7  jenis  bakteri selama 3 hari. Hal ini didukung juga dari hasil penelitian Dahm et al. (2005) dan Varase et al. (1996) dalam May  (2011),  yang  memperoleh bakteri hasil ekstraksi dari jenis ektomikoriza.
Morfologi Bakteri Asal Scleroderma citrinum Hasil  ekstraksi sporocarp bakteri  dari ektomikoriza ( S. citrinum ) yang terdapat 7 jenis bakteri  dapat  dideskripsikan  berdasarkan morfologi bakteri yang dapat dilihat berdasarkan  permukaan,  bentuk,  warna,  dan tepian  bakteri.  Morfologi  bakteri  asal S. citrinum disajikan pada tabel 1 dan gambar 5.
Tabel 1 . Morfologi bakteri asal S. citrinum Perlakuan Bentuk Tepian Warna Permukaan Scl 1 Circular Entire Putih Flat/Datar Scl 2 Circular Serrate Putih Flat/Datar Scl 3 Irreguler Serrate Kuning Flat/Datar Scl 4 Circular Lobate Kuning Raised/Tebal Scl 5 Irreguler Undulate Kuning Raised/Tebal Scl 6 Filamentous Filamentous Putih Flat/Datar Scl 7 Circular Lobate Putih Convex/Cembung
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
Gambar 5 . (a-g) Bentuk morfologi bakteri asal S. citrinum
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
Uji Antagonis Bakteri Asal S. citrinum Terhadap Penyakit Tanaman Fusarium Bakteri  asal S.  citrinum sebanyak  7  jenis bakteri  yang  telah  dideskripsikan  tersebut kemudian  dilakukan  pengujian  terhadap cendawan patogen Fusarium sp. Hasil
pengujian
antagonis penghambatan
perkembangan  cendawan  patogen Fusarium sp.  disajikan  pada  tabel  2  dan  secara  visual perbedaan  penghambatan  cendawan  patogen dari  setiap  bakteri  antagonis  yang  diuji  tersaji pada gambar 6.
Tabel 2. Penghambatan perkembangan cendawan patogen Fusarium sp. Perlakuan Perkembangan Radial Miselium (cm) Persen Penghambatan (%) Kontrol 9,00a* 0,00 Scl 1 6,28bcd 30,19 Scl 2 6,70b 25,56 Scl 3 6,55bc 27,22 Scl 4 6,28bcd 30,19 Scl 5 6,07bcd 32,59 Scl 6 5,52cd 38,57 Scl 7 5,30d 41,11
*Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  menunjukkan  bahwa  pengaruh  yang  tidak berbeda nyata berdasarkan uji lanjut Duncan pada tingkat kesalahan 5%.
Gambar 6. Grafik perkembangan radial miselium patogen Fusairum sp.
Hasil  analisis  pengujian  statistik  dengan  uji lanjut  Duncan  menunjukkan  kontrol  berbeda nyata  terhadap  isolat  bakteri  Scl  1,  Scl  2,  Scl 3,  Scl  4,  Scl  5,  Scl 6, dan Scl 7. Isolat bakteri Scl  1,  Scl  2,  Scl  3,  Scl  4  dan  Scl  5  tidak berbeda nyata,  Scl 2 dan Scl 7, sedangkan  Scl 1  Scl  4,  Scl  5,  Scl  6,  dan  Scl  7  tidak
berbeda  nyata.  Hasil  dari  setiap  perlakuan (kecuali  kontrol)  mempunyai  sifat  untuk menghambat  pertumbuhan  radial  cendawan patogen Fusarium sp.,  tetapi  persentase penghambat  yang  paling  tinggi  terdapat  pada isolat  Scl  7  dengan  persentase  penghambat 41,11%, lalu diikuti dengan Scl 6, Scl 5, Scl 4,
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
Scl  1,  Scl  3,  dan  Scl  2  yaitu  masing-masing sebesar  38,57%,  32,59%,  30,19%,  30,19%, 27,22%,  dan  25,56%.  Hasil  dari  ekstraksi S. citrinum dan  uji  antagonis  dapat  disimpulkan bahwa  hipotesis  penelitian  adalah  menerima H 1 ,  yaitu:  ditemukan  bakteri  dalam sporocarp S.  citrinum dan  memiliki  peran  sebagai  agen antagonis.
Fusarium sp.  merupakan  spesies  patogenik yang menyebabkan penyakit layu pada berbagai tanaman,  banyak  juga  fusarium  yang  terdapat dalam  tanah  bertahan  sebagai klamidospora atau sebagai hifa pada sisa tanaman dan bahan organik lain (Saragih dan Silalahi 2006).
Penyakit Fusarium sp . diuji  dengan  bakteri asal S.  citrinum yang  diperoleh  berdasarkan hasil  pengujian  dalam  penelitian  ini,  dimana  7 bakteri asal S. citrinum mempunyai kemampuan  untuk  menghambat  penyakit Fusarium sp . yang bervariasi. Isolat bakteri Scl 7  diduga  memiliki  potensi  untuk menghambat patogen Fusarium sp., hal tersebut dapat dilihat dari persentase yang sangat tinggi. Hal ini juga didukung  oleh  Otter  et  al. (2004) dalam Hartanto  dan Heni  (2016)  bahwa  antagonis dapat  di  kategorikan  memiliki  aktivitas penghambatan  yang  tinggi  apabila  persentase mencapai 60% bila persentase hanya mencapai 30%  maka  mikroorganisme  antagonis  tersebut memiliki  efek penghambatan  yang  minimal. Rustam et al. (2011), menyatakan bakteri yang memiliki kemampuan menghambat pada media mengindikasikan isolat tersebut selain memiliki mekanisme  penghambatan  secara  antibiosis, isolat juga memiliki kemampuan penghambatan dalam  kompetisi  atau  persaingan  nutrisi  atau kompetisi ruang. Hasil penelitian Hutabalian et al. (2015), juga menyatakan bahwa pertumbuhan Fusarium  oxysporum dapat dihambat  oleh  jamur  saprofit  dan endofit. Penghambatan  tersebut  diduga  terjadi  karena adanya  persaingan  dari kedua  isolat,  dimana persaingan akan ruang tumbuh dan nutrisi yang berada  pada media  tumbuh.  Hal  ini  juga
didukung Soesanto (2008) dalam Hutabalian et al. (2015)  menyatakan  persaingan  nutrisi  dan ruang  hidup  merupakan  suatu  peran utama hampir pada semua agen hayati. Salah satu cara untuk pengendalian hayati adalah meningkatkan  aplikasi  penggunaan  fungi ektomikoriza  dan  fungi mikoriza  arbuskula (FMA)  dalam  pengendalian  penyakit  hutan (Barea et al. 2005 dalam May 2011). Menurut  Baker  (1990) dalam Djatnika (2012),  dalam  proses antagonistic yang  terjadi pada  luar  tanaman  inang  (pada  media  biakan), yaitu  dapat  bersifat  antibiosis,  kompetisi,  dan eksplotasi  (predasi  dan  hiperparasitisme). Menurut  Kamus  Besar  Bahasa  Indonesia (KBBI)  Edisi  Keempat  (2011),  bakteri  yang bersifat antibiosis ialah bakteri yang menghambat  perkembangan  suatu  populasi akibat  pembentukan  suatu  zat  racun  yang disebabkan  oleh  populasi  lain.  Bakteri  yang bersifat kompetisi ialah bakteri yang melakukan persaingan  terhadap  mikroorganisme  lainnya. Bakteri yang bersifat predasi ialah bakteri yang melakukan serangan dan penghancuran langsung  terhadap  mikroorganisme  lain,  dan bakteri  yang  bersifat  hiperparasitisme  ialah bakteri  yang  bersifat  parasit  yang  hanya menguntungkan satu organisme tersebut.
Secara  visual  pada  penelitian  ini  dapat diamati  tidak  tampak  adanya  eksploitasi  oleh bakteri  asal S.  citrinum sebagai  antagonis terhadap  penyakit Fusarium sp.,  sehingga diduga  bakteri  asal S.  citrinum memiliki  sifat sebagai antibiosis dan kompetisi (pesaing hara). Malinda et  al. (2015) juga  menyatakan bakteri yang  memiliki  kemampuan  antibiosis  diduga mempunyai  senyawa  yang  dapat  mengganggu pertumbuhan fisiologis dan morfologis cendawan.
Menurut  Sastrosuwignyo  (1998);  Firdausyi (2005) dalam Wenno (2015), suatu mekanisme penghambatan  antagonis  bakteri  terhadap mikroorganisme lainnya dapat disebabkan oleh adanya  suatu  aktivitas  antibiotik  yaitu
@ Asosiasi Peneliti Biodiversitas Papuasia - Fakultas Kehutanan UNIPA
Jurnal Kehutanan Papuasia 6 (1) : 10 - 20 (2020)
Malin,  dkk
dihasilkannya  macam-macam  zat  antibiotik. Hal  tersebut  juga  disampaikan  May  (2011) bahwa  kemampuan  bakteri  untuk  menghambat perkembangan  miselium  cendawan  patogen kemungkinan ada hubungan aktivitas enzimatik yang  dihasilkan  oleh  bakteri.  enzim  hidrolitik yang  dihasilkan  oleh  suatu  bakteri  dapat mendegradasi  dinding  sel  cendawan  patogen. Menurut  Purwantisari  et  al. (2005) dalam Malinda et al. (2015), menyatakan ada beberapa cara  bakteri  untuk  menghambat  serangan cendawan,  diantaranya  bakteri  memiliki senyawa  bioaktif  yang  mampu  mendegradasi dinding  sel  cendawan,  bakteri  mampu mengganggu  permeabilitas  membran  sel cendawan,  dan  bakteri  berfungsi  sebagai inhibitor terhadap suatu enzim yang dihasilkan cendawan.

## DAFTAR PUSTAKA
Djatnika. 2012. Seleksi bakteri antagonis untuk mengendalikan layu fusarium pada tanaman Phalaenopsis .  Balai  Penelitian  Tanaman Hias. Cianjur. 22(3) : 276-284. http://media.neliti.com/media/publications , (17 Mei 2018). Hadi S. 2001. Patologi hutan :
Perkembangannya  di  Indonesia.  Fakultas Kehutanan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Hartanto dan Heni. 2016. Uji antagonis 5 isolat Tricoderma dari  rizosfer Pinus sp  terhadap pertumbuhan  cendawan Collectotricum sp. penyebab penyakit  antraknosa  pada  cabai secara in-vitro. Balai  Penelitian Tanaman Sayuran.
Hutabalian  M,  Pinem  MI,  Oemry  S.  2015.  Uji antagonis  beberapa  jamur  saprofit  dan endofit  dari  tanaman  pisang  terhadap
Fusarium oxysporum .sp. cubens di laboratorium.  Fakultas  Pertanian  USU. Medan.  3(2)  :  687  –  695.  Di  unduh  pada  : http://media.neliti.com/com/media/publicati ons , (24 Mei 2018).
Malinda N, Soekarno BPW, Yuliani TS. 2015. Penghambatan Fusarium  oxysporum oleh kultur  filtrat  bakteri  endofit  dari  tanaman kedelai  secara in  vitro .  IPB.  Bogor.  11(6)  : 196  –  204. http://journal.ipb.ac.id ,  (25  Mei 2018).
May  NL.  2011.  Diversitas  bakteri  asal  spora fungi  mikoriza  arbuskula Gigaspora sp  dan Glomus sp.  serta  potensinya  sebagai mycorrhiza helper bakteria . [Tesis]. Bogor : Program Studi Silvikultur Tropika, IPB. Rustam,  Giyanto,  Wiyono  S,  Santosa  DA,
Susanto  S.  2011.  Seleksi  dan  identifikasi bakteri  antagonis  sebagai  agens  pengendali hayati  penyakit  hawar  pelepah  Ppadi. Penelitian  Pertanian  Tanaman  Pangan  IPB. Bogor. http://panan.litbang.pertanian.go.id (23 Mei 2018).
Saragih  YS,  Silalahi  FH.  2006.  Isolasi  dan identifikasi  spesies fusarium penyebab  layu pada  tanaman  markisa  asam.  Kebun Percobaan Tanaman Buah Barastagi. Medan. J. Hort . 169(4).
Semangun  H.  2001.  Pengantar  ilmu  penyakit tumbuhan.  Fakultas  Pertanian.  Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta.
Wenno  T.  2015.  Pemanfaatan  bakteri  asal endomikoriza  sebagai  antagonis  cendawan patogen  ikutan  benih Pometia  pinnata, Pterocarpus  indicus dan Aquilaria  filaria. Fakultas  Kehutanan  Universitas  Papua Manokwari, (Tidak diterbitkan).