## EFEKTIFITAS BAKTERI INDIGENOUS LIMBAH CAIR BATIK UNTUK DEKOLORISASI SISA PENCELUPAN TEKSTIL DENGAN ZAT WARNA REMAZOL
BLUE
1) Martiningsih,ST., M.Si
2) Syifa Ur Rahmi, S.ST., M.Pd
Dosen Program Studi Teknik Tekstil STT Wastukancana Purwakarta
1) martiningsih@stt-wastukancana.ac.id, 2) syifa@stt-wastukancana.ac.id
Abstrak : Bakteri indigenous hasil isolasi dari limbah cair batik adalah bakteri yang memiliki kemampuan adaptasi yang baik terhadap kondisi limbah dan memiliki aktivitas enzim yang mampu melakukan proses dekolorisasi zat warna untuk diubah menjadi senyawa  yang lebih sederhana, dapat juga diuraikan menjadi sumber nutrisi untuk perkembangannya (Mayanti dan Herto,2009). Tujuan dari penelitian ini  untuk mendapatkan bakteri indigenous yang potensial  dan kondisi optimum untuk menurunkan zat warna remazol blue. Zat warna remazol blue adalah salah satu jenis dari zat warna reaktif yang banyak digunakan pada industri pencelupan tekstil. Proses dekolorisasi zat warna remazol blue pada konsentrasi 50, 100 dan 200 mg/L dengan cara Submerged Fermentation (SmF) atau fermentasi  terendam  menurut  Hernandez,  (2008)  dan  Bergsten-Torralba,  (2009).  Efisiensi  dekolorisasi  atau perombakan  zat  warna  dari  variasi  konsentrasi  zat  warna  ditentukan  berdasarkan  perbandingan  konsentrasi zat warna yang mengalami perombakan terhadap konsentrasi zat warna mula-mula dan dinyatakan dalam %. Pada akhirnyadidapatkan genus Bassilus spp yang mampu menurunkan kadar warna hingga 90% pada kosentrasi zat warna 100 mg/L.

## Kata kunci : Bakteri indigenous, zat warna remazol blue, dekolorisasi

## PENDAHULUAN
Pada  umumnya  pengolahan  limbah  dilakukan dengan  cara  koagulasi  dan  filtrasi,  akan  tetapi pengolahan cara ini menghasilkan limbah sampingan  berupa sludge .  Usaha  pemanfaatan potensi  mikroorganisme  sedang  dikembangkan  dan diupayakan  dalam  berbagai  aspek  dan  bidang kehidupan.  Proses  degradasi  yang  bersifat  ramah lingkungan,  dan  juga  tidak  menghasilkan  limbah sampingan.  Mikroorganisme  juga  berperan  penting dalam siklus biogeokimia yang mendukung berbagai metabolisme  makhluk  hidup  di  muka  bumi  yang secara  alamiah  mampu  mendegradasi  senyawa- senyawa toksik dan bahan-bahan pencemar sehingga dapat  dimanfaatkan  dalam  proses  bioremediasi limbah. Mikroorganisme tersebut merupakan bagian dari kekayaan dan keragaman hayati Indonesia yang dapat  diisolasi  dari  lapisan tanah dan  perairan atau laut. Isolat mikroorganisme yang potensial tersebut bahkan  dapat  juga  diisolasi  dari  berbagai  macam limbah  industri,  termasuk  limbah  industri  tekstil (Mohandass et al ., 2007).
Selain  di  Indonesia,  di  berbagai  negara  lain juga  telah  ditemukan  9  isolat  bakterI  yang  mampu mendegradasi zat warna azo dari genus Chryseobacterium dan  genus Flafobacterium (Khadijah et al .,, 2009). Isolat bakteri tersebut sangat potensial  untuk  dimanfaatkan  dalam  proses dekolorisasi  atau  degradasi  zat  warna  pada  limbah hasil industri pengolahan batik.
Limbah  batik  yang  pekat  dengan  parameter kimia dan fisika yang tinggi, sangat berpotensi untuk ditemukan  bakteri indigenous yang  mampu melakukan proses dekolorisasi terhadap limbah cair tekstil  dari  sisa  pencelupan  dengan  zat  warna sintetis.  Bakteri indigenous adalah  bakteri  yang secara  alamiah  mampu  hidup    pada  lingkungan tertentu  yang  merupakan  tempat  tumbuh  bakteri tersebut  sejak  awal,  seperti  limbah  dan  substrat tertentu.  Bakteri    tersebut  sudah  teradaptasi  dan diharapkan  mampu  melakukan  degradasi  senyawa- senyawa organik dan  pencemar yang terdapat pada limbah  pada  kondisi  yang  sesuai.  Mikroba indigenous yang terdapat pada limbah umumnya dari kelompok  bakteri  dan  jamur  (Mayanti  dan  Herto, 2009).
Bakteri indigenous hasil  isolasi  dari  limbah batik  tersebut    tentu  akan  memiliki  kemampuan adaptasi  yang  baik  terhadap  kondisi  limbah  dan memiliki  aktivitas  enzim  yang  mampu  melakukan proses dekolorisasi zat warna untuk diubah menjadi senyawa  yang  lebih  sederhana,  sehingga  tidak berbahaya terhadap lingkungan.
Keberadaan zat warna dalam limbah cair tekstil dapat  dikenali  dengan  mudah  karena  secara  visual dapat  terlihat  dengan  jelas  walaupun  jumlahnya hanya  sedikit.  Dengan  demikian,  air  limbah  yang mengandung  zat  warna  memerlukan  perlakuan penghilangan warna sebelum dibuang ke lingkungan.  Limbah  cair  berwarna  pada  umumnya dihasilkan  oleh  industri   tekstil, khususnya  industri pencelupan atau pewarnaan serta industri pembuatan
zat  warna.  Zat  warna  yang  banyak  digunakan  pada industri  tekstil  umumnya  terdiri  dari  kelompok senyawa  azo.  Salah  satu  zat  warna  dari  kelompok azo  adalah  zat  warna  reaktif  atau  remazol blue (Nigam et al .,, 1996).
Zat  warna reaktif  atau remazol blue termasuk dalam  kelompok  zat  warna  aromatik  yang  sukar terdegradasi secara biologi karena adanya ikatan azo pada  beberapa  senyawa  tersebut.  Sekitar  10-15% dari  sisa  proses  pencelupan  dan  pembuatan  zat warna  akan  terbuang  ke  lingkungan.  Pembuangan sisa zat warna tersebut tentu sangat berbahaya bagi lingkungan  dan makhluk hidup  di  sekitarnya.  Oleh karena  itu,  diperlukan  suatu  perlakuan  atau  proses penghilangan warna sebelum dibuang ke lingkungan (Murachman, 1996).
Beberapa mikroba indigenous tertentu memiliki  kemampuan  untuk  menggunakan  zat warna  sebagai  sumber  karbon  dan  nitrogen  dan mereduksi  zat  warna  tersebut  dengan  enzim  azo reduktase (Sharma et al, 2009). Penggunaan bakteri indigenous lebih menguntungkan dibanding menggunakan  bakteri  komersial.Selain  harganya mahal,  bakteri  komersial  juga  belum  tentu  sesuai dengan karakteristik limbah yang akan diolah, selain itu dapat menyebabkan terjadinya kompetisi dengan mikroba alami yang terdapat didalam limbah. Isolat- isolat  lokal  dari  daerah  tercemar  memiliki kemampuan  mendegradasi  limbah  dengan  baik. Bakteri    yang  diisolasi  dari  limbah  batik kemungkinan  besar  memiliki  kemampuan  untuk menurunkan kadar pencemar atau warna dari limbah cair  tekstil  sisa  pencelupan.  Penelitian-penelitian terdahulu  menunjukkan  bahwa  penggunaan  bakteri untuk  proses  degradasi  zat  warna  telah  banyak dilakukan    misal  dari  jenis Actinomycetes, Chrysobacterium dan Flafobacterium (Mane, et al. , 2008; Khadijah, et al., 2008).
Pada  penelitian  ini  akan  dilakukan  proses dekolorisasi zat warna remazol blue dalam beberapa variasi  konsentrasi  yaitu  50,  100  dan  200  mg/L dengan  menggunakan  isolat  bakteri indigenous potensial  asal  limbah  cair  batik  dari daerah Trusmi Cirebon, Jawa Barat. Penelitian ini diharapkan dapat meningkatkan  efektivitas  perombakan  zat  warna remazol blue pada limbah cair tekstil dengan teknik dekolorisasi  secara  biologis  yang  lebih  efisien  dan ramah lingkungan.

## METODOLOGI
Penelitian  dilakukan  di  laboratorium  dengan metode  deskriptif  analisis  dengan  3  tahapan peneltian.

## Isolasi bakteri indigenous
Metode  yang  digunakan  dalam  proses  isolasi bakteri indigenous adalah metode deskriptif dengan cara Pour  Plate atau  cawan  tuang melalui serangkaian pengenceran sampel. Limbah batik yang diambil  berasal dari  bak penampungan limbah yang akan dibuang ke luar. Sampel limbah cair sebanyak
1 ml diencerkan dengan 9 ml NaCL fisiologis steril hingga  pengenceran  10 -8 .  Sampel  limbah  cair  dari tiga  pengenceran  terakhir,  yaitu  pengenceran  10 -6 , 10 -7 dan 10 -8 masing-masing diambil sebanyak 1 ml dan dituang kedalam cawan petri yang berisi 20 ml media  cair  Nutrient  Agar  (NA)  yang  ditambahkan limbah  cair  batik.  Sampel limbah  cair  dan  medium dicampur  hingga  homogen  dengan  cara  memutar cawan  petri  secara  perlahan  diatas  meja.  Setelah medium beku, cawan petri kemudian dibalik agar air kondensasi tidak jatuh keatas agar karena permukaan agar  harus  kering.  Semua  cawan  petri  kemudian dibungkus  dengan  kertas  dan  diinkubasi  di  dalam inkubator  pada suhu 37 0 C selama 1x24 jam. Koloni- koloni  bakteri  yang  tumbuh  dalam  cawan  petri diisolasi  untuk  setiap  koloni  yang  berbeda.  Koloni yang  telah  diisolasi  kemudian  dimurnikan  dengan cara  mengambil  satu  ose  koloni  bakteri,  lalu digoreskan  pada  medium  agar  NA  miring  dalam tabung reaksi. Tabung reaksi yang telah berisi kultur bakteri kemudian dibungkus dan diinkubasi di dalam inkubator    pada  suhu  37 0 C  selama  1x24  jam, kemudian  disimpan  di  dalam  lemari  es  agar  kultur bakteri tahan lama.

## Seleksi atau skrining bakteri indigenous.
Seleksi dilakukan dengan fermentasi terendam ( Submerged  Fermentation )  pada  medium  cair, seleksi bakteri indigenous dilakukan untuk mendapatkan  isolat  bakteri  terbaik  yang  potensial untuk  proses  dekolorisasi  zat  warna remazol blue . Sebanyak  10%  atau  10  ml  suspensi  bakteri  dari kultur murni  dimasukkan ke  dalam  fermentor  yang berisi  90  ml  medium  yang  mengandung  zat  warna reaktif  dengan  konsentrasi  50  mg/liter,  kemudian diaduk hingga tercampur homogen. Fermentor yang telah  berisi  medium  yang  mengandung  zat  warna reaktif  dan  suspensi  bakteri  kemudian  diinkubasi pada suhu ruangan (27 0 C) selama 7 hari. Perubahan warna  diamati  dan  dianalisis  berdasarkan  tingkat dekolorisasi  zat  warna  pada  medium  yang  berisi masing-masing  isolat  bakteri  yang  berbeda.  Isolat bakteri terbaik dipilih berdasarkan tingkat dekolorasi tertinggi  dan  waktu  dekolorisasi  tercepat.  Isolat bakteri  dengan  tingkat  dekolorasi  tertinggi  dan waktu  dekolorisasi  tercepat  tersebut  kemudian ditetapkan  sebagai  isolat  terpilih  yang  akan digunakan pada proses dekolorisasi zat warna.

## Identifikasi bakteri indigenous
Identifikasi  bakteri indigenous dilakukan dengan  teknik  pewarnaan  konvensional  menurut Cowan,  (1974).  Kultur  murni  bakteri indigenous hasil  isolasi  dan  seleksi  diidentifikasi  untuk mengetahui genus bakteri tersebut melalui serangkaian  pewarnaan.  Beberapa  jenis  pewarnaan dan  uji  yang  dilakukan  untuk  mengidentifikasi bakteri  tersebut  antara  lain  pewarnaan  gram, pewarnaan  kapsul,  pewarnaan  spora  dan  uji biokimia. Proses identifikasi dilakukan secara duplo atau  pengulangan  sebanyak  2  kali    untuk
menghasilkan  data  identifikasi  bakteri  yang  lebih akurat. Tahap  ketiga  yaitu  tahap  dekolorisasi  zat warna remazol blue dengan 3 variasi konsentrasi zat warna,  dan 4 isolat bakteri indigenous selama   7 hari  inkubasi.  Parameter  yang  diamati  adalah pertumbuhan  bakteri selama  proses  dekolorisasi dengan  metode Total  Plate  Count (TPC)  dari serangkaian pengenceran sampel, efisiensi dekolorisasi dari setiap isolat bakteri selama proses dekolorisasi melalui pengukuran absorbansi sampel dengan  metode  Spektrofotometrik  pada  panjang gelombang maksimum yang ditentukan.

## Pembuatan Kurva Standar Zat Warna Remazol Blue
Pembuatan  kurva  standar  asam  galakturonat dilakukan  dengan  dengan  mengukur  absorbansi  zat warna  remazol blue pada  spektrofotometer  dengan panjang gelombang maksimum sebagai standar baku perombakan  zat  warna  remazol blue yang  akan dikonversikan  ke  dalam  persen  (%)  dekolorisasi. Sebanyak  0,338  gram  zat  warna  remazol blue dilarutkan dalam 1 liter akuades, sehingga diperoleh larutan  standar  zat  warna  remazol blue dengan konsentrasi 400 ppm, kemudian dari larutan standar 400  ppm  tersebut  diencerkan  hingga  diperoleh larutan  standar  zat  warna  remazol blue dengan konsentrasi 350 ppm, 300 ppm, 250 ppm, 200 ppm dan  200  ppm,  150  ppm,  100  ppm  dan  50  ppm. Kemudian masing-masing larutan standar dari setiap konsentrasi tersebut dihitung absorbansinya dengan menggunakan spektrofotometri pada panjang gelombang  maksimum.  Nilai  hasil  absorbansi  dari hasil  pengukuran  tersebut  kemudian  dibuat  dalam bentuk  grafik  linear.  Kurva  standar  zat  warna remazol blue dinyatakan  baik  apabila  nilai  regresi mendekati atau sama dengan 1.

## Dekolorisasi Zat Warna Remazol Blue
Metode  yang  digunakan  dalam  proses dekolorisasi zat warna remazol blue adalah metode deskriptif  eksperimental  dengan  cara Submerged Fermentation (SmF)  atau  fermentasi  terendam
menurut Hernandez, (2008) dan Bergsten-Torralba, (2009).  Sebanyak  10%  atau  100  ml  dari  masing- masing  suspensi  bakteri  dari  kultur  murni  yang berbeda  dimasukkan  secara  aseptik  ke  dalam masing-masing  botol  fermentor  yang  berisi  900 ml zat warna remazol blue steril dengan konsentrasi 50 mg/L, 100 mg/L dan 200 mg/L, kemudian diinkubasi pada  suhu  ruangan  (27 o C)  selama  7  hari.  Selama proses dekolorisasi dilakukan penghitungan pertumbuhan  bakteri  dengan  metode Total  Plate Count (TPC)  dan  analisis  efisiensi  dekolorisasi dengan  spektrofotometer  UV-Vis  pada  panjang gelombang maksimum selama 7 hari inkubasi.

## Pengukuran Pertumbuhan Bakteri
Pertumbuhan  bakteri  selama  7  hari  proses dekolorisasi  dilakukan  secara  langsung  atau  DC ( Direct  Count )  dengan  TPC  ( Total  Plate  Count ). Sampel  zat  warna  reaktif  yang  berisi    inokulum bakteri yang telah dihomogenkan diambil dari botol fermentor  sebanyak  1  ml,  kemudian  dimasukkan secara aseptic ke dalam tabung reaksi pertama yang berisi  9  ml  NaCl  fisiologi  steril.  Tabung  pertama merupakan  pengenceran  10 -1 .  Kemudian  1  ml sampel hasil pengenceran pertama diambil sebanyak 1 ml dan dimasukkan ke dalam tabung rekasi kedua yang  berisi  9  ml  NaCl  fisiologi  steril  untuk pengenceran  10 -2 .  Dengan  prosedur  yang  sama dilakukan  pengenceran    hingga  10 -7 .  Kemudian masing-masing 1 ml dari tiga pengenceran terakhir, yaitu pengenceran 10 -6 , 10 -7 dan 10 -8 dimasukkan ke dalam cawan petri steril, lalu ke dalam cawan petri tersebut dituangkan 20 ml medium NA hangat (suhu + 40 0 C) dengan metode tuang ( Pour Plate ). Cawan petri  tersebut  kemudian  diputar  di  atas  meja  agar medium  NA  dan  bakteri  tercampur  homogen. Setelah  campuran  bakteri  dan  medium  membeku, cawan  petri  kemudian  dibungkus  dengan  kertas dengan posisi terbalik agar air kondensasi tidak jatuh ke atas permukaan medium. Cawan petri diinkubasi di dalam inkubator pada suhu 37 0 C selama 1x24 jam, kemudian  jumlah  kolonin  bakteri  dihitung  dengan rumus sebagai berikut :
Keterangan : a  =  Jumlah  koloni  bakteri  pada pengenceran ke-x
b  =  Jumlah  koloni  bakteri  pada pengenceran ke-y
c  =  Jumlah  koloni  bakteri  pada pengenceran ke-z

## Analisis Efisiensi Dekolorisasi
Efisiensi dekolorisasi dianalisis dengan menggunakan  dilakukan  dengan  menggunakan
spektrofotometer  UV-Vis  pada  panjang  gelombang maksimum selama 7 hari dekolorisasi. Sebanyak 10 ml  zat  warna  hasil  dekolorisasi  diambil  dari  botol fermentor, kemudian disentrifugasi dengan kecepatan  3000  rpm  selama  30  menit.  Supernatan hasil sentrifugasi diambil dan dimasukkan ke dalam kuvet,  lalu  diukur  absorbansinya  menggunakan spektrofotometer  UV-Vis  pada  panjang  gelombang maksimum. Efisiensi dekolorisasi atau perombakan zat  warna  dari  variasi  konsentrasi  zat  warna ditentukan  berdasarkan  perbandingan  konsentrasi zat  warna  yang  mengalami  perombakan  terhadap konsentrasi  zat  warna  mula-mula,  kemudian
Jumlah sel/ml = (a x 10 x ) + (b x 10 y ) + (c x 10 z )
3
efisiensinya dihitung dengan rumus sebagai berikut :
Bagan Alir Penelitian Dekolorisasi (%) = (Absorbansi Awal) – (Absorbansi Akhir) (Absorbansi Awal) x 100% LIMBAH DEKOLORISASI TAHAP DEKOLORISASI Pembuatan Kurva Standar Zat Warna Remazol Blue Dekolorisasi Zat Warna Remazol Blue Penghitungan Pertumbuhan Bakteri Analisis Efisiensi Dekolorisasi Kurva Standar Zat Warna Remazol Blue Perombakan Zat Warna Remazol Blue Profil Pertumbuhan Bakteri Persentase Efisiensi Dekolorisasi TAHAP PENYEDIAAN ISOLAT BAKTERI INDIGENOUS Isolasi Bakteri Indigenous Seleksi/Skrining Bakteri Indigenous Identifikasi Bakteri Indigenous Isolat Bakteri Indigenous Isolat Bakteri Indigenous Terbaik Genus Bakteri Indigenous TAHAP PERSIAPAN Persiapan Alat dan Bahan Sterilisasi Alat dan Bahan Alat dan Bahan Tersedia Alat dan Bahan Steril

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Isolasi, Seleksi dan Identifikasi Bakteri

## Indigenous Limbah Cair Batik
Berdasarkan  hasil  isolasi  dari  limbah  cair batik  pada  uji  pendahuluan  melalui  serangkaian pengenceran,  diperoleh  sebelas  isolat  bakteri indigenous yang  berpotensi  untuk  menurunkan kadar  warna  pada  limbah  cair  batik.  Sebelas  isolat bakteri tersebut  kemudian  diseleksi  dengan  metode fermentasi  kultur  terendam  atau Submerged Fermentation (SmF)  dan  diperoleh  empat  isolat bakteri unggul yang potensial untuk
proses dekolorisasi limbah zat warna.
Pada  proses  dekolorisasi  lanjutan  dengan pengaturan  berbagai  variasi  konsentrasi  zat  warna, dari  empat    isolat  bakteri indigenous tersebut  akan diketahui  satu  isolat  terbaik  yang  paling  unggul untuk  proses  dekolorisasi  limbah  cair  batik.  Isolat bakteri  unggul  tersebut  dipilih  berdasarkan  waktu dekolorisasi tercepat dan tingkat efisiensi dekolorisasi  terbesar  dalam  menurunkan  kadar warna  pada  limbah  cair  batik.  Berdasarkan  hasil identifikasi dengan metode pewarnaan, empat isolat bakteri  unggul  tersebut  tergolong  dalam  genus
Bacillus seperti ditampilkan pada  Gambar 4.1.
Gambar 4.1. (A) Koloni Bacillus spp.. (B) Mikroskopis Bacillus spp .
(Sumber gambar : Dokumentasi Pribadi, 2012)
Pertumbuhan    Bacillus  spp.    pada  Variasi Konsentrasi Zat Warna
Berdasarkan  kurva  pertumbuhan  bakteri  pada Gambar  4.2(A,B,C),  dapat  diketahui  bahwa  pada konsentrasi  zat  warna  50  mg/l,  100  mg/l  dan  200 mg/l tedapat fase adaptasi ( lag phase ) pertumbuhan Bacillus sp. pada awal fermentasi hingga hari kedua fermentasi.  Pertumbuhan Bacillus spp.  memasuki fase  eksponensial  dengan  jumlah  pertumbuhan tertinggi pada hari ke-3 fermentasi

## Dekolorisasi Zat Warna Remazol Biru
Pada  awal  fermentasi  telah  terjadi  proses dekolorisasi  dengan  rata-rata  efisiensi  yang  lebih tinggi  pada  konsentrasi  zat  warna  50  mg/l  dan  100 mg/l  (Gambar  4.3A-B),  akan  tetapi  efisiensi dekolorisasi  tertinggi  terdapat  pada  konsentrasi  zat warna  100  mg/l  dengan  menggunakan  bakteri Bacillus spp1., yaitu hingga 90,88%.
Efisiensi dekolorisasi pada konsentrasi zat warna 200 mg/L (Gambar 4.3C) lebih rendah dibandingkan dengan efektivitas dekolorisasi pada konsentrasi 50 mg/l dan 100 mg/l. Hal ini disebabkan karena konsentrasi zat warna yang terlalu tinggi akan mempengaruhi kemampuan bakteri untuk melakukan pertumbuhan dan melakukan dekolorisasi untuk menurunkan kadar zat warna.
Bacillus spp 1 . Bacillus spp 2 . Bacillus spp 3 . Bacillus spp 4 .
Bacillus spp 1 . Bacillus spp 2 . Bacillus spp 3 . Bacillus spp 4 . 0 50 100 150 200 0 1 2 3 4 5 6 7 P e r tu m b u h a n Ba k te r i (X 1 0 8 s e l/ m l) Waktu  Dekolorisasi (Hari) Kurva Pertumbuhan Bakteri pada Konsentrasi Zat Warna 50 PPM Bacillu s spp1. Bacillu s spp2. Bacillu s spp3.
Gambar  4.2  Kurva  pertumbuhan  bakteri  pada  variasi konsentrasi zat warna

## Pengaruh Pertumbuhan Bakteri Terhadap Nilai
COD  (Chemical      Oxygen  Demand)  dan  pH  Zat Warna Remazol Biru
Efisiensi  perubahan  COD  hasil  dekolorisasi ditampilkan  pada  Gambar  4.6.  Nilai  rata-rata  dari masing-masing  COD  pada  zat  warna  remazol  biru pada akhir fermentasi menunjukkan penurunan yang sangat  signifikan,  yaitu  30,38-65,29%  Hal  ini menunjukkan  bahwa  masing-masing  jenis  bakteri Bacillus spp.  tersebut  memiliki  kemampuan  yang tinggi dalam merombak zat warna dan menurunkan kadar    COD  yang  terkandung  pada  zat  warna remazol  biru  walaupun  nilai  COD  setelah pengolahan  melalui  dekolorisasi  masih  melampaui baku  mutu  limbah  yang  diijinkan,  sehingga  masih perlu dilakukan penelitian lanjutan untuk optimisasi penurunan  nilai  COD  yang  terkandung  pada  zat warna sesuai dengan baku mutu yang diijinkan.
Berdasarkan  hasil  pengukuran  pH  medium  pada awal dan akhir dekolorisasi pada penilitian ini
Gambar 4.3. Grafik efisiensi dekolorisasi zat warna remazol biru berdasarkan variasi konsentrasi zat warna
berkisar  antara  6,54-8,28.  Hal  ini  dikarenakan  oleh zat  warna remazol  biru  yang  merupakan zat  warna sintetis dengan kandungan senyawa kimia yang lebih tinggi, sehingga nilai pH bernilai basa sebagaimana hasil  pengukuran  yang  telah  dilakukan.  Dari  hasil pengamatan  tersebut,  maka  bakteri Bacillus spp. potensial yang ditemukan pada penelitian ini bersifat neutrofilik dan alkalofilik, karena dapat hidup pada medium  di  atas  pH  7  hingga  pH  8,28  (Sumarsih, 2003).

## KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian,  maka  dapat disimpulkan beberapa hal sebagai berikut :
1.  Terdapat  empat  isolat  bakteri indigenous dari limbah cair batik yang efektif untuk dekolorisasi zat warna remazol blue pada limbah cair tekstil.
0 50 100 150 200 250 0 1 2 3 4 5 6 7 P e r tu m b u h a n Ba k te r i (X 1 0 8 s e l/ m l) Waktu  Dekolorisasi (Hari) Kurva Pertumbuhan Bakteri pada Konsentrasi Zat Warna 100 PPM Bacillus spp1. Bacillus spp2. Bacillus spp3. 0 50 100 150 200 0 1 2 3 4 5 6 7 P e r tu m b u h a n Ba k te r i (X 1 0 8 s e l/ m l) Waktu  Dekolorisasi (Hari) Kurva Pertumbuhan Bakteri pada Konsentrasi Zat Warna 200 PPM Bacillus spp1. Bacillus spp2. Bacillus spp3. 0.00 20.00 40.00 60.00 80.00 100.00 1 2 3 4 5 6 7
Efi si e n si D e k o lo r is a si (% ) Waktu  Dekolorisasi (Hari) Efisiensi Dekolorisasi pada Konsentrasi 50 mg/l Bacillus spp1. Bacillus spp2. Bacillus spp3.
Bacillus spp4.
0.00 20.00 40.00 60.00 80.00 100.00 1 2 3 4 5 6 7 Efi si e n si D e k o lo r is a si (% ) Waktu  Dekolorisasi (Hari) Efisiensi Dekolorisasi pada Konsentrasi 100 mg/l Bacillus spp1. Bacillus spp2. Bacillus spp3. Bacillus spp4. 0.00 20.00 40.00 60.00 80.00 100.00 1 2 3 4 5 6 7 Efi si e n si D e k o lo r is a si (% ) Waktu  Dekolorisasi (Hari) Efisiensi Dekolorisasi pada Konsentrasi 200 mg/l Bacillus spp1. Bacillus spp2.
Bacillus spp3.
Bacillus spp4.
2.  Bakteri Bacillus spp 1 .  merupakan  bakteri
indigenous yang paling efektif untuk dekolorisasi  zat  warna  remazol blue dengan efisiensi dekolorisasi sebesar 90,88%.
3.  Konsentrasi  zat  warna  sebesar  100  mg/l  dan waktu  dekolorisasi  selama  3  hari  merupakan kondisi  optimum    untuk  proses  dekolorisasi  zat warna  remazol blue dengan  menggunakan bakteri indigenous asal limbah cair batik.

## Saran
Perlu  dilakukan  penelitian  lanjutan  dengan menggabungkan dua jenis atau lebih bakteri Bacillus spp.  secara  konsorsium  untuk  menggabungkan masing-masing keunggulan dari setiap jenis bakteri tersebut  untuk  menghasilkan  efisiensi  dekolorisasi yang lebih tinggi dengan waktu yang lebih singkat. Selain  itu,  perlu  juga  dilakukan  penelitian  lanjutan untuk proses sacle up dekolorisasi limbah cair tekstil dengan  skala  yang  lebih  besar,  sehingga  dapat diaplikasikan di lapangan.

## DAFTAR PUSTAKA
Bergsten-Toralba,L.R., Nishikawa,M.M.,
Baptista,D.I.,  Magalhaes,D.P.,    daSilva,M.
Decolorization  of    Different  Textile  Dyes  By Penicillium simplicisimum and Toxicity
Evaluation  After  Fungal  Treatment . 2009. Brazillian Journal of Microbiology(2009)40:808-817.
Hernandez,  C.E-Luna,  G.Gutierrez  soto,  S.M.
Salcedo-Martinez. 2008. Screening for
decolorization Basidiomycetes
in
Mexico .World  J  Microbio  lBiotechnol(2008) 24:465-473.
Khadijah,O.,  Lee  K.K,  Mohd  Faiz  F.,  Abdullah (2009). Isolation,  screening,  and development of   local  bacterial  consortia  with  azo  dyes decolorizing  capability. Malaysian  journal  of microbiology, Vol 5 (1) 2009, pp 25-32.
Mane,  U.V.,  Gurav,  P.N.,  Deshmukh,  A.M., Govindwar, S.P. (2009). Degradation of textile dye  reactive  navy-blue  Rx  (Reactive  blue-59) by  an  isolated  actinomycete  Streptomyces krainskii  SUK-5 .  Malaysian  Journal  of Microbiology, Vol 4 (2) 2008, pp. 1-5. Mayanti,B dan Herto Dwi Arysyadi.2009. Identifikasi Keberagaman Bakteri Pada Comercial  Seed  Pengolah  Limbah  Cair  Cat.
Institut Teknologi Bandung. Mohandass Ramya.m, Bhaskar
Anusha.,S.Kalavathy and S.Devilaksmi. 2007.
Biodecolorization & Biodegradation of Reactive  Blue  by  Aspergillus sp . African
Journal  of  Biotechnology  Vol.6(12).pp.1441- 1445,18 june 2007.
Montano,  J.G.  2007. Combination  Of  Advanced Oxidation Processes and Biological
Treatments  For  Commercial  Reactive  Azo Dyes Removal . Theses . Universitait Autonoma de Barcelona. Bella terra.
Murachman, B. 1996. Konsep Penanganan Limbah.
Tesis .Program  Pasca  Sarjana  Universitas Gajahmada. Yogyakarta.
Nigam.  P.,  Banat.  I.M.,  Singh.D  1996. Microbial Process  For  The  Decolorization  of  Textile Effluent  Containing  Azo,  Diazo  and  Reactive Dyes. Process Biochem 31: 435 – 442.
Sharma.D.K.,H.S Saini,M.Singh, S.S. Chimini, B.S. Chada. 2004. Isolation and Characterization of Microorganism  Capable  Of  Decolorizing
Various Triphenylmethane Dyes. Basic
Microbiol 44:59-65.