ISSN 2085-2916  e-ISSN 2337-3652 Tersedia daring http://jai.ipb.ac.id J. Agron. Indonesia, April 2021, 49(1):89-96 DOI: https://dx.doi.org/10.24831/jai.v49i1.32046 Studi Pemangkasan dan Aplikasi Sitokinin-Giberelin pada Tanaman Teh ( Camellia sinensis (L.) O. Kuntze) Produktif Klon GMB 7
Study of Pruning and Cytokinin-Giberelin Applications on Productive Tea Plant (Camellia sinensis (L.) O. Kuntze) GMB 7 Clone
Intan Ratna Dewi Anjarsari 1 , Jajang Sauman Hamdani 1 , Cucu Suherman 1 , Tati Nurmala 1 , Heri Syahrian Khomaeni 2 , dan Vitria Puspitasari Rahadi 2
1 Departemen Budidaya, Fakultas Pertanian, Universitas Padjadjaran Jl. Raya Bandung-Sumedang Km 21 Jatinagor 40600, Bandung, Indonesia
2 Pusat Penelitian Teh dan Kina (PPTK) Gambung Ciwidey, Bandung, Indonesia Diterima 9 Agustus 2020/Disetujui 4 Maret 2021

## ABSTRACT
Pruning of tea plants is carried out in productive tea plantations with varying types and heights of pruning. Pruning causes most or all of the photosynthetic organs of the plant to be lost, and regrowth of new shoots takes about 2-3 months. The addition of cytokinins benzyl amino purine (BAP) and gibberellin (GA) is expected to accelerate shoot growth after pruning. The purpose of this study was to determine the effect of pruning, BAP and GA application on the growth and yield of tea shoots after pruning. The experiment was carried out in Tea and Cinchona Gambung Research Center from August 2017 to October 2018 using a split split plot design consisting of type of pruning as the main plot (clean pruning and lung pruning), pruning height (40 cm, 50 cm, and 60 cm) as the subplot, BAP and GA application as the sub-sub plot (0 ppm, 60 ppm BAP, 50 ppm GA, 60 ppm BAP + 50 ppm GA). The results showed that clean pruning and 60 ppm BAP + 50 ppm GA produced the best growth on shoots height. Pruning height of 60 cm and 60 ppm BAP showed the highest leaf chlorophyll index of third months as much as 91.58 (higher compared to previous research results of 62.5-75.28), while the pruning height of 60 cm and 60 ppm BAP + 50 ppm GA produced the highest fresh shoot weight per shrub. Individually, 50 cm pruning height reduced the number of dormant shoots and 50 ppm GA shortened the length of shoot dormancy to 22 days.

## Keywords: banji shoots, productive tea, shoots dormancy

## ABSTRAK
Pemangkasan pada tanaman teh yang dilakukan di kebun teh produktif menyebabkan sebagian besar atau secara keseluruhan organ fotosintesis tanaman hilang dan diperlukan waktu sekitar 2-3 bulan utuk tumbuh kembali. Pemangkasan dilakukan  dengan  jenis  dan  tinggi  pangkasan  yang  bervariasi.  Penambahan  sitokinin  benzil  amino  purine  (BAP)  dan giberelin (GA) diharapkan dapat mempercepat pertumbuhan pucuk setelah dipangkas. Tujuan penelitian  adalah mempelajari pengaruh pemangkasan serta aplikasi BAP dan GA terhadap pertumbuhan dan hasil pucuk teh. Percobaan dilaksanakan kebun percobaan Pusat Penelitian Teh dan Kina Gambung bulan Agustus 2017-Oktober 2018 menggunakan rancangan split-split plot terdiri dari jenis  pemangkasan  (pemangkasan  bersih dan  pemangkasan  ajir) sebagai petak utama, tinggi pangkasan sebagai anak petak (40 cm, 50 cm, dan 60 cm), aplikasi BAP dan GA sebagai anak-anak petak (0 ppm, 60 ppm BAP, 50 ppm GA, 60 ppm BAP+ 50 ppm GA). Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemangkasan bersih dan 60 ppm BAP + 50 ppm GA menghasilkan pertumbuhan terbaik pada tinggi tunas. Tinggi pangkasan 60 cm dan 60 ppm BAP menunjukkan indeks klorofil daun tertinggi bulan ke-3 sebesar 91.58 (lebih tinggi daripada hasil penelitian sebelumnya yaitu 62.5-75.28), sedangkan tinggi pangkasan 60 cm dan 60 ppm BAP + 50 ppm GA memberikan bobot basah pucuk per perdu tertinggi pada pemetikan produksi. Secara tunggal, tinggi pangkasan 50 cm menurunkan jumlah pucuk burung serta 50 ppm GA mempersingkat lamanya masa dormansi pucuk menjadi 22 hari.
Kata kunci: dormansi pucuk, pucuk burung, teh produktif

## PENDAHULUAN
Hasil  teh  secara  signifikan  tergantung  pada  bentuk perdu. Pemangkasan  pada tanaman teh produktif bertujuan membentuk perdu yang baik melalui perbaikan percabangan, mempermuda umur jaringan dan menurunkan bidang petik. Pemangkasan  akan  menginisiasi  banyak  cabang  lateral dari bagian bawah batang, selanjutnya akan meningkatkan jumlah cabang pemangkasan Pemilihan jenis, ketinggian dan waktu pemangkasan akan sangat menentukan keberhasilan pemangkasan. Hal ini ditandai dengan jangka waktu antara tanaman setelah dipangkas hingga menumbuhkan kembali tunas baru tidak terlalu lama.  Menurut Ahmad et al . (2014) pemangkasan   pada waktu yang tepat dapat meningkatkan produktivitas pucuk.
Pemilihan  jenis  pemangkasan  dan  ketinggian pemangkasan  akan  menentukan  kecepatan  pertumbuhan teh  berikutnya.  Jenis  pemangkasan  yang  tepat    untuk tanaman  teh  produktif  adalah  jenis  pemangkasan  bersih dan pemangkasan ajir atau jambul. Pemangkasan ajir atau jambul  menyisakan ranting disisi kiri dan kanan perdu  agar selama proses pemulihan setelah dipangkas tanaman masih dapat  berfotosintesis  (Mphagwe,  2009). Pemangkasan bersih dapat dilakukan pada musim hujan  dan dilakukan di  kebun  teh  yang  umumnya  berada  di  dataran  tinggi. Pemangkasan  bersih  dianjurkan  dilakukan  saat  kadar  air cukup dan kondisi ini dapat terjadi saat musim hujan karena pada  saat  pemangkasan  bersih  semua  organ  fotosintesis dibuang dan tanaman hanya mengandalkan cadangan pati dalam akar untuk pertumbuhannya.
Ketinggian  pemangkasan  juga  merupakan  faktor penting  yang  perlu  diperhatikan  dalam  pemangkasan. Pemangkasan  pada  perdu  teh  umumnya  dilakukan  pada ketinggian  yang  berbeda  (50-60  cm)  sesuai  dengan kondisi agroekologis (Ebanoidze dan Kutelia, 2018). Hasil penelitian  Saikia  dan  Baruah  (2013)  menunjukkan  bahwa pada ketinggian pemangkasan 50 cm  menghasilkan daun yang  sehat  dan  hasil  tanaman  yang  lebih  tinggi. Selain jenis dan ketinggian pangkasan, pemulihan perdu teh dari pemangkasan  bergantung  pada  kesehatan  perdu  dalam hal ini kadar pati di akar. Oleh karena itu, agar diperoleh hasil  yang  baik  dalam  pemangkasan,  tanaman  teh  yang akan dipangkas sebaiknya dalam keadaan kesehatan yang optimal, yaitu harus  mempunyai makanan cadangan yang cukup  sekitar  12%  (Santoso,  2007).  Pemangkasan  dapat menyebabkan kematian akar pada beberapa kondisi karena pasokan karbohidrat tidak memadai (Chesney dan Vasquez, 2012). Dengan demikian penentuan kadar pati akar, kondisi lingkungan serta status hara sebelum pemangkas diperlukan agar meminimalisasi tingkat kematian perdu teh (Anjarsari et al ., 2018). Perkembangan  bidang  petik  dan  pertumbuhan tunas sebagai bakal pucuk teh  setelah pemangkasan pada umumnya  terjadi  secara  alami  tanpa  penambahan  zat pengatur tumbuh (ZPT). Sitokinin adalah hormon esensial untuk pertumbuhan dan perkembangan tanaman, merupakan kelas  turunan  purin  berperan  mengontrol  berbagai  proses perkembangan sepanjang siklus hidup tumbuhan, termasuk gametogenesis,  spesifikasi  meristem  akar,  perkembangan
vaskular,  pertumbuhan  pucuk  dan  akar,  homeostasis meristem,  penuaan  daun  (Zurcher  dan  Muller,  2016). Selain  itu,  cytokinin  memediasi  respons  terhadap  isyarat lingkungan  seperti  cahaya,  stres,  dan  kondisi  nutrisi  juga berperan  dalam    transisi  etioplas  ke  kloroplas  (Cortleven dan Schmulling, 2015).
Tunas  samping  yang  tertekan  pertumbuhannya disebabkan  antara  lain  oleh  keadaaan  kahat  sitokinin (Salisbury  dan  Ross,  1995).  Menurut  Mazid et al. (2011) sitokinin  berinteraksi  secara  kompleks  untuk  mengontrol berbagai  aspek  yang  berkaitan  dengan  pertumbuhan, perkembangan  serta  diferensiasi  dan  jika  terjadi  defisensi menyebabkan perubahan perkembangan pleiotropik seperti penurunan tunas dan peningkatan pertumbuhan akar.
Sitokinin  diberikan  kepada  tunas  yang  dorman, menginisisasi  aktivitas  mitosis  dan  tunas  mulai  tumbuh. Aplikasi  sitokinin  berperan  dalam  pengembangan struktur tajuk (Autio dan Day, 2016) menunjukkan  bahwa penggunaan  fitohormonal  memiliki  potensi  besar  untuk lebar tajuk terutama setelah dipangkas. Pemberian sitokinin pada  tanaman  teh  setelah  dipangkas  akan  meningkatkan pertumbuhan  tunas lateral. Menurut Kebrom et al. (2013) arsitektur tajuk tanaman ditentukan oleh  meristem apikal primer  dan  cabang  lateral  turunannya.  Jumlah  cabang lateral memiliki pengaruh yang besar terhadap hasil, pada tanaman  teh  banyaknya  cabang  lateral  membuat  bidang petik semakin lebar dan memungkinkan banyak bakal tunas yang tumbuh.
Zat  pengatur  tumbuh  lainnya  yang  digunakan adalah Giberelin (GA). Giberelin merupakan zat pengatur tumbuh  yang  mengatur  banyak  aspek  pertumbuhan  dan perkembangan tanaman (Binenbaum et al., 2018). Menurut Nagar  dan  Kumar (2000)  efek GA terkonjugasi  menurun pada  saat   pucuk  teh  dalam kondisi dorman. Pertumbuhan pucuk  dormansi  (pucuk  burung)  yang  lebih  banyak dibandingkan  pucuk  peko  akan  menurunkan  kualitas  teh. Pemberian  3%  dan  4%  GA  berpengaruh  positif  terhadap parameter  tinggi  tanaman,  jumlah  cabang,  luas  daun  dan biomassa segar (Maudu et al., 2011). Aplikasi Benzil Amino Purine (BAP) dan Giberelin (GA) pada tanaman produktif dianggap  perlu  dengan  pertimbangan  bahwa  penambahan ZPT  ini  dapat  memacu  pertumbuhan  cabang  lateral  dan tunas  serta  penggunaan  giberelin  untuk  memecahkan dormansi pucuk. Penelitian ini bertujuan untuk mempelajari pengaruh pemangkasan dan aplikasi BAP dan GA terhadap pertumbuhan dan hasil teh di kebun produktif.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  dilaksanakan  di  Kebun  Pusat  Penelitian Teh dan Kina Gambung pada bulan Agustus 2017 sampai Oktober  2018.  Bahan tanaman yang digunakan tanaman Bahan  tanaman  yang  digunakan  tanaman teh  produktif  klon GMB 7 (umur 7 tahun)  sebanyak 960 tanaman (satu plot sebanyak 10 tanaman) dengan jarak tanam 110 cm x 90 cm, BAP, GA3, air. Alat-alat yang digunakan di lapangan adalah alat pangkas, sprayer , waring, timbangan, hand  counter ,  amplop  kertas,  oven  untuk  mengeringkan sampel  pucuk,  timbangan  analitik,  dan  klorofilmeter  tipe SPAD.
Pemangkasan dilakukan satu kali (pemangkasan ajir dan  pemangkasan  bersih)  dilakukan  pada  bulan  Oktober 2017 sedangkan aplikasi BAP dan GA  dilakukan setelah pemangkasan  dengan  interval  14  hari  sekali  dengan disemprotkan    merata  pada  perdu  teh  hingga    periode pemetikan  produksi    (Agustus  2017-Oktober  2018)  yang dilakukan sebanyak enam kali.  Satu plot  dengan ukuran 20 m 2 memerlukan air sebanyak 3 liter (setelah kalibrasi). Rancangan  analisis  menggunakan  split  split  plot terdiri atas  jenis pemangkasan sebagai petak utama, tinggi pangkasan  sebagai anak petak dan  aplikasi ZPT sebagai anak-anak  petak.  Petak  utama  terdiri  atas  2  taraf  jenis pangkasan yaitu pangkasan bersih (J1) dan pangkasan ajir (J2). Anak petak terdiri atas 3 taraf tinggi pangkasan : 40 cm (P1), 50 cm (P2), 60 cm (P3). Anak anak petak terdiri atas 4 taraf  aplikasi ZPT : tanpa ZPT (Z1), 60 ppm BAP (Z2), 50 ppm GA (Z3), 60 ppm BAP+ 50 ppm GA (Z4).
Karakter  yang  diamati  dan  diukur  setelah  aplikasi ZPT  meliputi:  (1)  Tinggi  tunas  dilakukan  dengan  selang waktu 7 hari  sekali setelah pemangkasan sampai menjelang tumbuhnya  pucuk  peko  dilakukan  selama    dua  bulan pertama setelah tanaman teh dipangkas. (2) Jumlah pucuk burung dihitung pada cabang atau ranting dengan interval 7 hari sekali. (3) Dormansi pucuk (hari), dilakukan dengan mengamati setiap hari saat keluarnya pucuk burung berumur satu hari sampai akhir masa pucuk burung selama periode pemetikan  produksi  (3  bulan)  pada  sampel  tanaman  yang sudah  ditandai.  (4)  Indeks  klorofil  daun  dilakukan  pada daun indung menggunakan klorofil meter tipe SPAD dengan interval 14 hari sekali.  Daun indung atau mother leaf adalah daun  tua  pertama  tempat  percabangan  pucuk  yang  sehat yang  telah  siap  dipetik,  berwarna    hijau  gelap  yang  telah mencapai  ukuran  penuh  bila  dibandingkan  dengan  daun- daun  tua  di  bawahnya  dan  terletak  di  ketiak  tunas  yang sedang tumbuh. (5) Bobot basah pucuk pemetikan produksi, dihitung dengan cara menimbang bobot basah pucuk setiap kali pemetikan dengan daur petik 14 hari sekali. Pengamatan dilakukan sebanyak enam kali.
Analisis  statistik  menggunakan  STAR  (Statistical Tool for Agricutural Research). Bila perlakuan hasil analisis ragam  menunjukkan  keragaman  yang  berbeda  nyata, dilanjutkan dengan Uji Duncan pada taraf kepercayaan 95% (Gasperz,1995).

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Tinggi Tunas
Hasil  analisis  menunjukkan  terdapat  pengaruh interaksi antara jenis pemangkasan bersih dan konsentrasi ZPT terhadap tinggi tunas minggu ke-4. Pada pemangkasan bersih dan 60 ppm BAP + 50 ppm GA menyebabkan jumlah tunas  tertinggi  dibandingkan  perlakuan  lainnya  (Tabel  1). Sebaliknya pada pemangkasan ajir dan aplikasi ZPT pada berbagai  taraf  konsentrasi  tidak  memberikan  pengaruh nyata terhadap tinggi  tunas. Hal ini disebabkan kehadiran ajir  (ranting  teh  disertai  daun)  pada  awal  pertumbuhan tunas  setelah  dipangkas  menyebabkan  pertumbuhan  tunas terganggu karena aliran pati untuk pertumbuhan tunas baru tidak  sepenuhnya  dialirkan  ke  tunas  namun  ada  alokasi menuju ranting ajir. Pemotongan ranting ajir dilakukan pada saat menjelang pemetikan jendangan.
Sitokinin adalah hormon tanaman yang esensial untuk merangsang  pembelahan  sel,  mengatur  ukuran  meristem pucuk,  jumlah  primordia  daun,  dan  pertumbuhan  daun dan  pucuk.  Sitokinin  dapat  menstimulasi  diferensiasi dan  perkembangan  tunas  aksilar  (Hwang et  al .,  2012). Menurut  Zhang et al .  (2018)  perlakuan  6-Benzyladenine juga meningkatkan panjang tunas lateral (atau cabang) dan diameter cabang lateral pada tanaman teh 5 bulan setelah pemangkasan.  Munculnya tunas dan  pertumbuhan  tanaman teh dipengaruhi oleh  adanya faktor  internal  sifat genetik dan komposisi  hormon pada tanaman untuk mempercepat dan  merangsang pemanjangan sel dan batang yang lebih banyak, dibantu oleh hormon giberelin dan faktor eksternal (lingkungan)    (Roman et al .,  2016).  Aktivitas    sitokinin adalah  elemen  kunci  dalam  membangun  dan    mengatur pembelahan  sel  di shoot  apical  meristem (SAM),  dengan penelitian  genetik  yang  menunjukkan  bahwa  sitokinin adalah regulator positif proliferasi sel di SAM (Kieber dan Schaller, 2014).
Giberelin  berperan  mengatur  pembelahan  sel  dan ekspansi untuk mengontrol perpanjangan pucuk atau tunas serta  memperbaiki  struktur  kanopi  (Rademacher,  2016). Hasil  penelitian Yue et  al. (2018)  menunjukkan  bahwa GA  merupakan  fitohormon  fundamental  yang  mengatur pertumbuhan dan perkembangan tanaman secara ekstensif,
Jenis pemangkasan Tinggi tunas (cm) 0 ppm 60 ppm BAP 50 ppm GA 60 ppm BAP + 50 ppm GA Pemangkasan bersih 12.78bB 16.17bAB 16.76bA 19.16aA Pemangkasan ajir 15.89bA 16.16bA 12.70bB 12.88bB
Tabel 1. Pengaruh interaksi jenis pangkasan dan aplikasi ZPT terhadap tinggi tunas tanaman teh
Keterangan: Angka rata-rata yang ditandai dengan huruf yang sama (huruf besar arah horisontal dan huruf kecil arah vertikal) tidak berbeda nyata menurut uji Duncan taraf 5%
terutama dormansi tunas dan transisi tunas pada teh sebagai tanaman  tahunan.  Giberelin  merangsang  pemanjangan  sel dengan  mengubah  sifat  dinding  sel;  sebagai  akibatnya, potensi air sel diturunkan memungkinkan untuk pengambilan air  dan  karenanya  peningkatan  volume  sel  (Jones  dan Kaufman, 2008).

## Jumlah Pucuk Burung dan Lamanya Dormansi Pucuk
Hasil  analisis  statistik  menunjukkan  bahwa  terdapat pengaruh tunggal tinggi pangkasan terhadap jumlah pucuk burung.  Perlakuan  tinggi  pangkasan  50  cm  menunjukkan pertumbuhan  jumlah  pucuk  burung  lebih  rendah dibandingkan  perlakuan  40  cm  dan  60  cm.  Selanjutnya hasil  analisis  menunjukkan  bahwa  terdapat  pengaruh tunggal konsentrasi ZPT yakni perlakuan 50 ppm GA dan perlakuan 60 ppm BAP + 50 ppm GA dapat menurunkan lamanya dormansi  pucuk.  Jenis pangkasan baik pangkasan bersih maupun pangkasan ajir tidak memberikan pengaruh terhadap jumlah pucuk burung maupun lamanya dormansi pucuk (Tabel 2).
Waktu  pecah  dormansi  pucuk  tercepat  ditunjukkan pada perlakuan 50 ppm GA dan tidak berbeda nyata dengan 60 ppm BAP + 50 ppm GA, disusul perlakuan 60 ppm BAP. Perlakuan 50 ppm GA ataupun 60 ppm BAP + 50 ppm GA pada  penelitian  ini  secara  signifikan  mempercepat  waktu pemecahan dormansi hal ini berkaitan dengan peran GA dan BAP dapat memecahkan fase dormansi  pada tanaman teh. Hasil penelitian ini menunjukkan lamanya dormansi sekitar 21 sampai 25 hari sedangkan lama dormansi umumnya 60 hari. Dormansi  tunas  atau  pucuk  merupakan  bentuk adaptasi tanaman tahunan ( perennial ) untuk bertahan hidup dalam  kondisi  lingkungan  yang  kurang  menguntungkan dan  hormon  tanaman  merupakan  mediator  yang  berperan dalam  proses  dormansi  (Liu  dan  Sherif,  2019).  Dormansi
pucuk  berkaitan  dengan  pertumbuhan  pucuk  burung  pada siklus pertumbuhan tanaman teh. Pucuk burung atau pucuk dorman  adalah  tunas  yang  tidak  aktif  terletak  pada  ujung pucuk.  Mekanisme  pemecahan  dormansi  pada  pucuk  teh berkaitan  dengan  peran  GA  adalah  bahwa  GA  eksogen menginisiasi  transportasi  hasil  fotosintesis  dari  daun  ke tunas melalui regulasi hubungan sink dan source .  Fotosintat yang  diproduksi  di  daun  pemeliharaan  memiliki  banyak kegunaan di dalam daun dan juga diubah sebagai sukrosa ke organ non fotosintetik seperti pucuk baru. Proses yang menentukan berapa banyak karbon yang dialokasikan untuk setiap  penggunaan  disebut  fotosintat  atau  partisi  karbon. Setelah tiba di sink, fotosintat dipartisi lagi untuk digunakan sebagai sumber energi bagi pertumbuhan pucuk (Halford, 2010). Pemberian  zat  pengatur  tumbuh  pada  tanaman  teh untuk  menginisiasi  munculnya  tunas  dan  pertumbuhan pucuk telah dilakukan diantaranya oleh Yoshimitsu (1970) yaitu  pemberian  giberelin  (GA)  berpengaruh  terhadap pertumbuhan  dan  perkembangan  pucuk.  Penyemprotan dengan GA pada awal pertumbuhan di musim semi membantu memecahkan masa dormansi  tunas  dan menginisiasi lebih awal  tumbuhnya  tunas  dibandingkan  yang  tidak  diberi perlakuan  GA.  Selanjutnya  penelitian  yang  dilakukan oleh  Krishnaraj et al. (2020)  yang  menunjukkan  aplikasi GA yang disemprotkan ke daun membantu meningkatkan kualitas dan kuantitas produksi teh dengan cara memecah dormansi  dan  merangsang  pertumbuhan  tunas.  Reaktivasi meristem  dorman  pada  pucuk  banjhi  (pucuk  dorman  atau pucuk  burung)  penting  dilakukan  untuk  meningkatkan kualitas dan kuantitas produksi teh.
Faktor  lain  yang  mempengaruhi  lamanya  masa dormansi  lainnya  adalah  faktor  cuaca,  merupakan  faktor penting yang mempengaruhi masa dormansi pucuk seperti suhu  dan  curah  hujan  (De  Costa et al., 2007).  Data  hasil pengamatan  suhu  di  Pusat  Penelitian  Teh  dan  Kina menunjukkan pada bulan Juli suhu maksimum 26.3 o C dan suhu minimum 13.8 o C dengan suhu rata-rata kisaran antara 18.9 o C.  Di samping itu kondisi di bulan Agustus 2018 masih terjadi musim kemarau dengan  suhu cukup tinggi dan curah hujan rendah. Umumnya pada kondisi kekeringan tanaman teh  cenderung  menumbuhkan  lebih  banyak  pucuk  burung dibandingkan  peko.  Namun  kecenderungan  jumlah  peko lebih banyak diduga penambahan BAP dan GA berpengaruh positif untuk memperpendek masa dormansi pucuk.

## Indeks Kandungan Klorofil Daun
Hasil  analisis  indeks  kandungan  klorofil  daun menunjukkan  terdapat  pengaruh  interaksi  antara  tinggi pangkasan  dan  konsentrasi  ZPT  terhadap  indeks  klorofil daun pada pengamatan bulan ke-1, ke-2 dan ke-3 (Tabel 3, 4, dan 5), namun jenis pangkasan baik bersih maupun ajir tidak memberikan pengaruh nyata terhadap indeks klorofil daun. Pada pengamatan bulan ke-1 (Tabel 3) menunjukkan tinggi  pangkasan  40  cm  dan  60  ppm  BAP  menunjukkan indeks  klorofil  daun  lebih  tinggi  dibandingkan  perlakuan lainnya,  namun  tidak  berbeda  nyata  dengan  perlakuan tinggi pangkasan 50 cm dan 50 ppm GA serta 60 cm dan 50
Perlakuan Jumlah pucuk burung Lamanya dormansi pucuk (hari) Tinggi pangkasan 40 cm 3.0a 23.25b 50 cm 2.6b 23.00b 60 cm 3.2a 23.19b Aplikasi ZPT 0 ppm 2.9b 25.25a 60 ppm BAP 3.0b 23.00b 50 ppm GA 2.8b 21.67c 60 ppm BAP + 50 ppm GA 3.0b 22.67bc Tabel 2. Pengaruh tunggal tinggi pangkasan dan konsentrasi ZPT terhadap jumlah pucuk burung dan lamanya dormansi pucuk teh (hari)
Keterangan:  Angka  rata-rata  yang  ditandai  dengan  huruf  yang sama  pada  kolom  yang  sama  tidak  berbeda  nyata menurut uji Duncan taraf 5%
ppm GA. Demikian pula pada bulan ke-2 (Tabel 4)  terdapat pengaruh antara tinggi pangkasan 40 cm dan 60 ppm BAP terhadap indeks klorofil daun (90.54), namun tidak berbeda nyata dengan perlakuan tinggi pangkasan 60 cm dan 60 ppm BAP  ( 91.58).  Pada bulan ke-3 (Tabel 5) terdapat pengaruh antara  tinggi  pangkasan  60  cm  dan  60  ppm  BAP  yang menunjukkan  indeks  klorofil  daun  tertinggi  dibandingkan perlakuan lainnya sebesar 91.58 bila dibandingkan dengan indeks klorofil teh hasil penelitian sebelumnya sebesar 62.5- 75.28 (Liu et al ., 2012). .
Ketinggian pangkasan 40 cm cukup berat bagi perdu teh untuk menumbuhkan kembali daun baru, namun dengan penambahan BAP 60 ppm tampaknya secara tidak langsung dapat meningkatkan indeks kandungan klorofil. Boonman dan Pons (2007) menyimpulkan bahwa kandungan pigmen dipengaruhi oleh interaksi cahaya dan konsentrasi sitokinin. Sitokinin  berperan  dalam  pengembangan  kloroplas, aplikasi  sitokinin  mengarah  pada  akumulasi  klorofil  dan meningkatkan konversi etioplast menjadi kloroplas. Tinggi
pangkasan  60 cm sesuai untuk diaplikasikan agar cadangan pati  yang  hilang  tidak  terlalu  banyak  untuk  pertumbuhan pucuk dan perkembangan daun pemeliharaan. Di samping pengaruh faktor perlakuan, nilai indeks klorofil daun dapat dipengaruhi  oleh  faktor  internal  (metabolisme  tanaman) maupun  ekternal  berkaitan  dengan  intensitas  penyinaran matahari optimal dalam mendukung proses fotosintesis.
Menurut  Santoso et al . (2014) bahwa  pemangkasan merupakan dasar  manipulasi  bentuk  dan  struktur  kanopi yang  ideal  bagi  terciptanya  lingkungan  dan  sekaligus proses  metabolisme    dalam    tanaman,  salah  satunya fotosintesis.  Daun pemeliharaan bekerja sebagai “pabrik” yang  terus  melaksanakan  proses  fotosintesis,  sehingga tanaman  akan  tetap  mendapat  “makanan”  berupa  zat  pati sebagai  hasil  dari  proses  tersebut.  Daun  pemeliharaan merupakan  mesin  fotosintesis  pada  tanaman  teh  dimana pada  daun  tersebut  terkandung  klorofil  sebagai  elemen kunci  dari  fotosintesis,  salah  satu  yang  diperlukan  untuk penyerapan  cahaya  (Hörtensteiner  dan  Kräutler,  2011).
Tabel 3. Pengaruh interaksi tinggi pangkasan dan konsentrasi ZPT terhadap indeks kandungan klorofil daun  (cci) pada bulan ke-1 pada tanaman teh Tinggi pangkasan Indeks kandungan klorofil bulan ke-1 (cci) 0 ppm 60 ppm BAP 50 ppm GA 60 ppm BAP + 50 ppm GA 40 cm 85.70bAB 92.58aA 86.25bA 84.77bB 50 cm 82.26bB 87.99aAB 89.05aA 86.40aB 60 cm 88.55aA 87.43aB 87.80aAB 85.76abB Keterangan: Angka rata-rata yang ditandai dengan huruf yang sama (huruf besar arah horisontal dan huruf kecil arah vertikal) tidak berbeda nyata menurut uji Duncan taraf 5%; cci = chlorophyl content index
Tinggi pangkasan Indeks kandungan klorofil bulan ke-3 (cci) 0 ppm 60 ppm BAP 50 ppm GA 60 ppm BAP + 50 ppm GA 40 cm 88.06aA 86.97bAB 86.32bAB 84.14bB 50 cm 84.00bB 86.88bB 89.13bA 85.72bB 60 cm 87.75abB 91.58aA 88.25bB 87.25bB
Tabel 5. Pengaruh interaksi tinggi pangkasan dan konsentrasi ZPT terhadap  indeks kandungan klorofil daun (cci) pada bulan ke-3 pada tanaman teh
Keterangan: Angka rata-rata yang ditandai dengan huruf yang sama (huruf besar arah horisontal dan huruf kecil arah vertikal) tidak berbeda nyata menurut uji Duncan taraf 5%. cci = chlorophyl content index
Tinggi pangkasan Indeks  kandungan klorofil bulan ke-2 (cci) 0 ppm 60 ppm BAP 50 ppm GA 60 ppm BAP + 50 ppm GA 40 cm 87.42bB 90.86aA 88.46abA 86.61bB 50cm 87.33bB 85.49bB 85.32bB 87.49bB 60 cm 84.83bB 90.54aA 86.69bAB 88.06abB
Tabel 4. Pengaruh interaksi tinggi pangkasan dan  konsentrasi ZPT terhadap indeks kandungan  klorofil daun (cci) pada bulan ke-2 pada tanaman teh
Keterangan: Angka rata-rata yang ditandai dengan huruf yang sama (huruf besar arah horisontal dan huruf kecil arah vertikal) tidak berbeda nyata menurut uji Duncan taraf 5%; cci = chlorophyl content index
Klorofil  merupakan  komponen  kloroplas  yang  utama  dan kandungan  klorofil  relatif  berkorelasi  positif  dengan  laju fotosintesis (Li et al ., 2016). Menurut Davies (2010) sitokinin dapat berperan dalam perluasan daun, yang dihasilkan dari pembesaran sel.

## Bobot Basah Pucuk Pemetikan Produksi
Hasil analisis statistik menunjukkan terdapat pengaruh interaksi  antara  tinggi  pangkasan  dengan  konsentrasi  GA terhadap bobot basah pucuk, namun jenis pangkasan baik pangkasan bersih maupun ajir tidak memberikan pengaruh interaksi terhadap bobot basah pucuk (Tabel 6 dan 7).
Perlakuan  tinggi  pangkasan  60  disertai  50  ppm  GA menunjukkan  pengaruh  interaksi  terhadap  bobot  basah
produksi namun tidak berbeda nyata dengan perlakuan tinggi pangkasan  40  cm  dan  50  ppm  GA.  Hal  ini  menunjukkan bahwa  baik    tinggi  pangkasan  40  cm,  50  cm,  dan  60  cm dengan  penambahan  GA  dapat  meningkatkan  produksi pucuk  teh  per  perdu. Penelitian  yang  dilakukan  Liang et  al. (1996)  menjelaskan  bahwa  giberelin  efektif  dalam merangsang flushing tanaman teh dan meningkatkan hasil daun teh. Selanjutnya  menurut  Maudu et al. (2011)  bahwa penambahan  GA  dapat  meningkatkan  biomassa  segar Athrixia phylicoides . Menurut De Costa et al . (2007) pada daun muda yang sedang  berkembang,  kapasitas  dan  efisiensi  fotosintesis berkembang secara bertahap. Oleh karena itu, tunas muda dan pucuk bergantung pada daun pemeliharaan untuk suplai proses fotosintesis. Tinggi pangkasan Bobot basah pucuk produksi per perdu (g) 0 ppm 60 ppm BAP 50 ppm GA 60 ppm BAP + 50 ppm GA 40 cm 8.55bC 12.24aAB 15.22aA 9.62bBC 50 cm 13.15aA 13.47aA 13.79aA 12.43aA 60 cm 9.64abBC 8.31bC 16.10aA 12.32aB
Tabel 6.  Pengaruh interaksi tinggi pangkasan dan konsentrasi ZPT terhadap bobot basah pucuk per perdu (g) pada tanaman teh
Keterangan: Angka rata-rata yang ditandai dengan  huruf yang sama (huruf besar arah horisontal dan huruf kecil arah vertikal) tidak berbeda nyata menurut uji Duncan taraf 5%
Karakter Sumber keragaman Jenis pangkasan (J) Tinggi pangkasan (P) Aplikasi ZPT (Z) J x P J x Z P x Z J x P x Z P value P value P value P value P value P value P value Tinggi tunas 0.08 0.12 0.48 0.79 0.03 0.69 0.31 Jumlah pucuk burung 0.21 0.02 0.92 0.29 0.73 0.27 0.37 Dormansi pucuk 0.59 0.91 0.00 0.31 0.08 0.47 0.08 Klorofil Bulan 1 0.75 0.71 0.01 0.06 0.59 0.03 0.33 Bulan 2 0.68 0.59 0.04 0.16 0.41 0.01 0.27 Bulan 3 0.13 0.02 0.07 0.01 0.21 0.03 0.80 Bobot basah pucuk 0.96 0.31 0.00 0.93 0.14 0.02 0.29
Tabel 7.  Rekapitulasi p-value pengaruh perlakuan dan interaksinya pada tiap karakter pengamatan tanaman teh
Keterangan: J = jenis pangkasan; P  = Tinggi pangkasan; Z = Aplikasi ZPT; p <0.05 mengindikasikan pengaruh nyata; p <0.01 mengindikasikan pengaruh sangat nyata

## KESIMPULAN
Perlakuan jenis pemangkasan bersih dan konsentrasi 60 ppm BAP + 50 ppm GA  menunjukkan pertumbuhan terbaik pada  tinggi  tunas. Tinggi  pangkasan  60  cm    dan  60  ppm BAP menunjukkan indeks klorofil daun tertinggi bulan ke- 3 dibandingkan hasil penelitian sebelumnya  (62.5-75.28),
sedangkan tinggi pangkasan 60 cm  dan 60 ppm BAP + 50 ppm  GA  memberikan  hasil  tertinggi  terhadap  hasil  bobot basah  pucuk  per  perdu    pada  pemetikan  produksi  ke-4. Secara tunggal, tinggi pangkasan 50 cm menurunkan jumlah pucuk burung serta konsentrasi 50 ppm GA  mempersingkat lamanya masa dormansi pucuk menjadi 22 hari.

## DAFTAR PUSTAKA
Ahmad, F., F.S. Hamid, S. Sarwar, A. Waheed, S. Aslam,   S. Islam, S. Hussain, N. Ahmad, I. Ali. 2014. Effect of different pruning times on the yield of tea ( Camellia sinensis L . ) under the climatic conditions of Mansehra – Pakistan. Sarhad J. Agric. 30:305-309.
Anjarsari, I.R.D., J.S. Hamdani,  C. Suherman,  T. Nurmala, H. Syahrian, V.P. Rahadi. 2018. Kadar pati akar dan sitokinin  endogen  pada  tanaman  teh  menghasilkan sebagai dasar penentuan pemangkasan dan aplikasi zat pengatur tumbuh. J. Kultivasi 17:617-621.
Autio,  A.M.,  M.E.  Day.  2016.  Cytokinin  phytohormonal effects on crown structure. Arbotic. Urban For. 42:1- 20.
Binenbaum,  J.,  R.Weinstain,  E.Shani.  2018.  Gibberellin localization and transport in plants. Trends Plant Sci. 23:410-421.
Boonman,  A.,  T.L.  Pons.  2007.  Canopy  light  gradient perception by cytokinin. Plant Signal. Behav. 2:489- 491.
Chesney,  P.,  N.  Vasquez.    2007.  Dynamics  of  non- structural carbohydrate reserves in pruned Erythrina poeppigiana and Gliricidia  sepium trees.  Agrofor. Syst. 69:89-105.
Cortleven, A., T. Schmulling. 2015. Regulation of chloroplast development and function by cytokinin. J. Exp. Bot. 66:4999-5013.
Davies,  P.J.  2010.  The  Plant  Hormones:  Their  Nature, Occurrence,  and  Functions.  Department  of  Plant Biology.  Cornell  University,  Ithaca,  New  York 14853, USA.
De Costa, W.A.J.M., A.J. Mohotti, M.A. Wijeratne. 2007. Ecophysiology  of  tea  (Review).  Braz.  J.  Plant Physiol. 19:299-332.
Ebanoidze,  N.,  G.  Kutelia.  2018.  Formation  issues  of  tea plantations. Internat. Sci. J. Mech. Agric. 2:49-51.
Effendi,  D.S.,  M.  Syakir,  M.  Yusron,  Wiratno.  2010. Budidaya  dan  Pasca  Panen  Teh.  http://perkebunan. litbang.pertanian.go.id [16/01/2018].
Gaspersz,  V.  1995.  Metode  Perancangan  Percobaan.  CV. ARMICO, Bandung, ID.
Gonbad,  R.A.,  U.R.  Sinniah,  M.A.  Aziz,  R.  Mohamad. 2014.  Influence  of  cytokinins  in  combination  with
GA3  on  shoot  multiplication  and  elongation  of  tea clone  Iran  100  ( Camellia  sinensis (L.)  O.  Kuntze). Sci. World J. 2014:1-9.
Halford N. G. 2010. Photosynthate partitioning. p. 67-82. In Davey M.R. ( Eds .). Plant Developmental Biology -  Biotechnological  Perspectives.  Springer,  Berlin, Heidelberg.
Hörtensteiner, S., B. Kräutler. 2011. Chlorophyll breakdown in  higher  plants.  Biochimica  et  Biophysica  Acta (BBA) Bioenergetics. 1807:977-988.
Hwang, I., J. Sheen, B. Müller. 2012. Cytokinin signalling networks. Annu. Rev. Plant Biol. 63:353-380.
Jones, R.L., P.B. Kaufman. 2008. The role of gibberellins in plant cell elongation. J. Crit. Rev. Plant Sci. 1:23-47.
Kebrom,  T.H.,  W.  Spielmeyer,  E.J.  Finnegan.  2013. Grasses providenew insights into regulation of shoot branching. Trends Plant Sci. 18:4-48.
Kieber, J.J., G.E. Schaller. 2014. Cytokinins. The Arabidopsis Book 12:1-35.
Krishnaraj, T., G. Prabu, A.K.A. Mandal 2020.  Synergistic effect of cytokinin and gibberllins stimulate release of dormancy in tea ( Camellia sinensis (L.) O. Kuntze) bud. Physiol. Mol. Biol. Plants 26:1035-1045.
Li, Z.X., W.J. Yang, G.J. Ahammed, C. Shen, P. Yan, X. Li,
W.Y. Han. 2016. Developmental changes in carbon and nitrogen metabolism affect tea quality in different leaf position. Plant Physiol. Biochem. 106:327-35.
Liang, Y., J. Lu, S. Shang. 1996. Effect of gibberellins on chemical composition and quality of  tea ( Camellia sinensis L). J. Sci. Food Agric. 72:411-414.
Liu, Z.A., J.P. Yang, Z.C. Yang. 2012.  Using a chlorophyll meter  to  estimate  tea  leaf  chlorophyll  and  nitrogen contents.  J. Soil Sci. Plant Nutr. 12:339-348.
Liu, J., S.M. Sherif. 2019. Hormonal orchestration of bud dormancy  cycle  in  deciduous  woody  perennials. Front. Plant Sci. 10:1-21.
Mazid, M., T.A.Khan, F.Mohammad. 2011. Cytokinins, A classical  multifaceted  hormone  in  plant  system.  J. Stress Physiol. Biochem. 7:347-368.
Mphagwe,  N.I.K.  2009.  Lung  Pruning  : A  review  for  the practice. http://www.cabi.org. [10 April 2020].
Nagar,  P.K.,  A.  Kumar.  2000.  Changes  in  endogenous gibberellin  activity  during  winter  dormancy  in  tea ( Camellia  sinensis (L.)  O.  Kuntze).  Acta.  Physiol. Plant 22:439-443.
Rademacher, W. 2016. Chemical regulators of Gibberellin status  and  Their  application  in  plant  Production. Annual Plant Reviews 49:359-403.
Roman,  H.,    F.F.  Barbier,    T.  Girault,    T.  Peron.  2016.
Cytokinins are initial targets of light in the control of bud outgrowth. Plant Physiol. 172:489-509.
Saikia, G.K.,  S. Baruah. 2013. Growth and yield of youg tea plants as affected by pruning and tipping. Agric. Sci. Digest. 33:324-326.
Salisbury, F. B., C.W. Ross. 1995. Fisiologi Tumbuhan (Jilid
3). Penerbit ITB, Bandung, ID.
Santoso,  T.B.    2007.  Pemangkasan.  http://www.montaya. com. [10 Maret 2016]. Santoso,  B.B.,  I.W.  Sudika,  I.K.D.  Jaya,  I.G.P.M. Aryana 2014. Hasil biji dan kadar minyak jarak kepyar Lokal Beaq  Amor  ( Ricinus  communis L.)  pada  berbagai umur pemangkasan batang utama. J. Agron. Indonesia 42:244-249.
Thirugnanasambantham,  G.  Prabu, A.K.A.  Mandal.  2020.
Synergistic  effect  of  cytokinin  and  gibberellins stimulates  releaseof  dormancy  in  tea  ( Camellia sinensis (L.)  O.  Kuntze)  bud.  Physiol.  Mol.  Biol. Plants 26:1035-1045.
Maudu, M.E.,  F.N.  Mudau, I.K.  Mariga. 2011. The effect of gibberellins on sprouting of cuttings and quality of bush tea ( Athrixia phylicoides DC). Afr. J. Biotechnol. 10:8741-6745.
Yoshimitsu,  Y.  1970.  Control  of  Tea-Plucking  Time  by Using Plant Growth Regulators. http://www. jircas. go.jp. [23 Juli 2019].
Yue, C., H. Cao, X. Hao, J. Zeng, W. Qian, Y. Guo, N.Ye ,
Y. Yang, X. Wang. 2018. Differential expression of gibberellin- and abscisic acid-related genes implies their roles in the bud activity-dormancy transition of tea plants . Plant Cell Rep. 37:425-44.
Zhang,  L.,  C.  Shen,  J.  Wei,  W.  Han.  2018.  Effects  of exogenous  6-benzyladenine  on  dwarfing,  shoot branching, and yield of tea plant ( Camellia sinensis ). HortScience 53:651-655.
Zurcher, E., B. Muller. 2016. Cytokinin synthesis, signaling, and  function-advances  and  new  insights.  Int.  Rev. Cell Mol. Biol. 324:1-38.