190 | How  to  cite  this  article  (APA) :  Juanda,  S.J.,Sianturi,I.T.,Kamlasi,Y.,&Panuntun,M.F.(2022). Hematologi  dan  Histopatologi  Insang  Ikan  Lele  Hasil  Budidaya  Pembudidaya  Lokal  di  Noekele Kabupaten  Kupang  Timur. BIO-EDU:  Jurnal  Pendidikan  Biologi,  7 (3),  190-198.  doi: https://doi.org/ 10.32938/jbe.v7i3.3596

## BIO-EDU: JURNAL PENDIDIKAN BIOLOGI
Tahun 2022, VOL. 7, No.3, Halaman 190-198, e-ISSN: 2527-6999
https://doi.org/ 10.32938/jbe.v7i3.3596

## HEMATOLOGI  DAN  HISTOPATOLOGI  INSANG  IKAN LELE  HASIL  BUDIDAYA  PEMBUDIDAYA  LOKAL  DI NOEKELE, KABUPATEN KUPANG TIMUR
Shobikhuliatul  Jannah  Juanda *1 ,  Ion  Tarsardo  Sianturi 2 ,  Yusuf  Kamlasi 3 , Muhammad Fajar Panuntun 4 1,2,3,4 Program  Studi  Teknologi  Budidaya  Perikanan,  Politeknik  Pertanian  Negeri  Kupang, Kupang, Nusa Tenggara Timur, 85011

## Received 20 November 2022 ABSTRACT
Revised 30 November 2022
The  aim  of  this study  was  to  determine  the  haematological  and  histopathological  of  the Catfish  gills  cultured  in  Noekele,  East  Kupang,  East  Nusa  Tenggara.  The  fish  samples used  were  catfish  taken  randomly  as  many  as  80  individuals  from  the  rearing  pond owned  by  local  farmers  in  Noekele,  then  taken  to  the  laboratory  for  measurement  of length  and  weight,  morphological  abnormalities  observation,  preparation  of  fish  blood smears  and  collection  of  gills  for  histological  preparation.  The  observation  of morphological  abnormalities  showed  body  lesion  (90%),  one  ventral  fins  (31.3%),  one pectoral  fins  (28.8%),  dull  and  pale  body  colors  (100%).  Erythrocyte  cell  damage  on haematological  observation  on  blood  smear  were  tear  drop  shaped,  fusion,  lacerated membrane,  nuclear  extrusion,  blebbed  nuclei,  sperocytes  (deformed  cells),  lysis  and shrinking  erythrocytes .  Based  on  histopathological  analysis,  gill’s  damage  were secondary  lamella  edema,  primary  lamella  vacuoles,  secondary  lamella  necrosis, epithelium  lifting,  secondary  lamella  fusion.  Loss  of  lamella  structure,  hyperplasia  and presence of parasites.
Accepted 2 Desember 2022 Published 5 Desember 2022

## Corresponding Author
Shobikhuliatul  Jannah  Juanda, shelbyshelby1017@gmail.com
Distributed under
CC BY-SA 4.0
Keywords :
Hematological; Histopathology; Catfish; Gill; Noekele

## 1 PENDAHULUAN
Usaha budidaya ikan lele di Kota Kupang saat ini terus mengalami perkembangan seiring meningkatnya hasil produksi ikan disertai naiknya tingkat konsumsi ikan lele di masyarakat. Dengan  adanya  peningkatan  konsumsi  ikan  lele,  menjadi  trigger  para  pembudidaya  ikan untuk  melakukan  budidaya  ikan  secara  intensif.  Lokasi  budidaya  ikan  yang  dulunya  lebih banyak terfokus  di  Kota  Kupang,  bahkan  saat  ini  sudah  merambah  ke  Kabupaten  Kupang, salah satunya adalah di Noekele, Kelurahan Tuatuka, Kabupaten Kupang Timur.
Budidaya  ikan  yang  semakin  intensif  bukan  tidak  mempunyai  faktor  penghambat. Menurut  Rustikawati  (2012),  semakin  intensif  suatu  kegiatan  budidaya  ikan,  maka  akan semakin  tinggi  tingkat  prevalensi  infeksi  penyakit  yang  akan  menyerang  ikan  budidaya tersebut. Infeksi penyakit merupakan salah satu faktor yang dapat menurunkan produksi ikan. Adanya  infeksi  penyakit  diketahui  dapat  menyebabkan  masalah  yang  serius  dalam  usaha budidaya ikan. Infeksi penyakit dengan intensitas serangan yang tinggi dapat mengakibatkan wabah yang mematikan dan kerugian dalam jumlah besar.
Menurut  Afriani  (2016),  pengamatan  terhadap  kesehatan  ikan  harus  dilakukan  sedini mungkin  agar  tidak  menimbulkan  pengaruh  terhadap  ikan  yang  sedang  dibudidayakan. Pemeriksaan kesehatan yang dapat dilakukan untuk melihat status kesehatan ikan antara lain pengamatan visual, mikroskopik, bakteriologi  dan virologis. Diagnosa awal  yang dilakukan untuk  mendiagonsis  penyakit  infeksi  pada  ikan  adalah  memperhatikan  tanda-tanda  klinis yang  meliputi  ciri-ciri  ekternal  maupun  internal  serta  perubahan  patologisnya.  Ciri-ciri eksternal  yang  dapat  diamati  meliputi  abnormalitas  pada  kenampakan  morfologi  ikan, sedangkan ciri internal yang diamati beberapa diantaranya adalah parameter hematologi dan histopatologi organ ikan.
Darah  ikan  merupakan  variabel  yang  sangat  sensitif  terhadap  perubahan  lingkungan perairan,  sehingga  sangat  cocok  untuk  digunakan  sebagai  alat  diasnotik  pemantauan kesehatan ikan  (Sesques  dan  Johnson,  2017;  Fazio,  2019).  Pengamatan  kerusakan  pada gambaran histologi organ ikan merupakan salah satu metode pemeriksaan untuk mendeteksi efek  agen  iritan  dan  patogen  pada  lingkungan  hidup  ikan  karena  pemeriksaan  tersebut ditujukan  untuk  melihat  perubahan  jaringan  yang  memungkinkan  terjadinya  abnormalitas jaringan (Mustafa dkk ., 2017; Safratilofa, 2017).
Informasi tentang hematologi dan histopatologi ikan telah banyak dilakukan oleh peneliti sebelumnya.  Penelitian  sebelumnya  tentang  pengamatan  hematologi  pada  ikan  bandeng  di Kecamatan  Alas-Nusa  Tenggara  Barat  yang  dilakukan  Utama dkk .  (2017),  menunjukkan adanya  kelainan  pada  sel  eritrosit,  yaitu nuclear  extrusion , binucleus , notched  nucleus dan lobed  nucleus dan  tidak  menemukan  kelainan  pada  sel  leukosit  dan  trombosit.  Sedangkan penelitian sebelumnya tentang pengamatan histopatologi pada ikan lele di Kota Kupang yang dilakukan  Juanda  dan  Edo  (2018),  menunjukkan  adanya  kerusakan  yang  terjadi  pada  organ insang,  diantaranya  adalah  telangeaktasis,  nekrosis,  edema,  hiperplasia,  perhimpitan  lamela sekunder,  fusi,  hemoragi,  kongesti  dan  jaringan  yang  lepas.  Namun,  informasi  tentang gambaran  hematologi  dan  kerusakan  jaringan  insang  ikan  lele  di  Kabupaten  Kupang  masih sangat minim. Padahal informasi tersebut dapat digunakan untuk pemantauan kualitas air dan penanggulangan  terhadap  serangan  penyakit  serta  antisipasinya.  Penelitian  ini  bertujuan untuk  mengetahui  gambaran  hematologi  dan  histopatologi  organ  insang  ikan  lele  hasil budidaya di Noekele, Kabupaten Kupang Timur, Nusa Tenggara Timur.

## 2 METODE
Sampel ikan yang digunakan adalah ikan lele hidup yang diambil secara acak sebanyak 80 ekor  dari  kolam  pembesaran  milik  pembudidaya  lokal  di  Noekele,  Kalurahan  Tuatuka, Kabupaten  Kupang  Timur,  Nusa  Tenggara  Timur.  Sampel  yang  telah  diambil  selanjutnya dibawa  ke  laboratorium  untuk  dilakukan  pengukuran  panjang  dan  berat,  pengamatan abnormalitas morfologi  ikan, pembuatan apusan  darah ikan dan pengambilan sampel organ insang yang selanjutnya dilakukan preparasi histologi.  Morfologi ikan yang diamati meliputi bentuk tubuh, sirip, sisik dan kelainan lainnya.
Sebelum  dilakukan  pembuatan  apusan  darah,  sampel  ikan  dipingsankan  dengan  cara menambahkan 2-3 tetes minyak cengkeh ke dalam media air. Setelah dipastikan pingsan, ikan diambil darahnya pada bagian linecalateralis sampai menyentuh tulang dengan menggunakan spuid  yang  sebelumnya  sudah  diberi  antikoagulan.  Pembuatan  apusan  darah  dilakukan
dengan  menggunakan  dua  buah  objek  glass  (  objek  glass  A  dan  B).  Darah  yang  ada  pada spuid di teterkan pada salah satu sisi objek glass A, kemudian salah satu sisi objek glass B ditempelkan pada tetesan darah tersebut dengan kemiringan sudut 45°. Kemudian objek glass B  ditarik  ke  sisi  lainnya  dari  objek  glass  A  dan  didorong  lagi  ke  arah  yang  berlawanan dengan  cepat,  kemudian  preparat  dikeringanginkan.  Preparat  apusan  darah  yang  sudah keringangin  kemudian  ditetesi  dengan  methanol  secara  merata,  kemudian  dikeringaningkan kembali.  Setelah  keringangin,  preparat  diwarnai  dengan  pewarna  giemsa  (10%)  dan dikeringanginkan kembali. Setelah kering, preparat  kemudian difiksasi dengan aquades dan ditunggu  hingga  kering.  Selanjutnya  preparat  diamati  di  bawah  mikroskop (Hirox digital microscope KH-8700) dengan perbesaran 800x.
Organ  yang  diambil  untuk  dibuat  preparat  histologi  adalah  organ  insang. Sebelum pembuatan  preparat  histologi,  sampel  dari  masing-masing  organ  dikelompokkan  sesuai dengan  kesamaan  abnormalitas  morfologinya  dan  diambil  perwakilan  sampelnya. Organ insang  diambil  dengan  cara  membedah  dan  mengambil  organ  dengan  menggunakan dissecting  set .  Insang  kemudian  diawetkan  sesaat  setelah  dibedah  dengan  cara  merendam organ dengan larutan formalin 4% yang selanjutnya dilakukan preparasi histologi. Preparasi histologi  meliputi fiksasi , dehidrasi ,  clearing,  infiltrasi,  embedding,  sectioning, peletakan pada object  glass, affixing, deparafinisasi, staining (pewarnaan HE) , mounting dan labeling (J dkk ., 2013). Analisis histopatologi dilakukan dengan mengamati gambaran histologi  pada preparat  secara  mikroskopik  pada  perbesaran  140-200  X.  Gambaran  struktur  histopatologi dianalisis dengan melakukan pembandingan gambaran histopatologi yang didapatkan dengan referensi  yang  ada.  Pembandingan  tersebut  mencakup  struktur  jaringan  mikroskopik  dari insang dan kerusakan jaringannya.

## 3 HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1 Abnormalitas Morfologi Ikan
Hasil  pengukuran  panjang  ikan  lele  menunjukkan  nilai  panjang  terendah  14,4  cm  dan tertinggi  17,5  cm.  Sedangkan  pengukuran  berat  ikan  menunjukkan  berat  terendah  17  gram dan tertinggi  28 gram.  Morfologi ikan lele yang diamati mengalami beberapa abnormalitas, diantaranya terdapat luka di tubuh (90%), sirip perut hanya sebelah (31,3%), patil (sirip dada) hanya  satu  (28,8%),  warna  tubuh  kusam  dan  pucat  (100%),  warna  insang  pucat  (91,3%) (Tabel  1).  Menurut  Pardamean dkk .,  (2021),  abnormalitas  yang  teramati  seperti  pada penelitian ini termasuk ke dalam kondisi ikan yang tidak sehat.
Penelitian  serupa  sebelumnya  yang  dilakukan  Juanda  dan  Edo  (2018),  pada  pengamatan morfologi  ikan  lele  yang  diambil  secara  acak  dari  para  penjual  ikan  di  Pasar  Oeba,  Kota Kupang  menunjukkan  beberapa  abnormalitas,  diantaranya  adalah:  bentuk  tubuh  ikan  yang tidak  proporsional,  sirip  dada  yang  panjang  sebelah,  sirip  perut  yang  besar  sebelah,  jumlah sirip dada hanya satu, tidak mempunyai sirip perut, jumlah sirip perut hanya satu dan terdapat bercak  warna  kuning  pada  tubuh.  Menurut  Ariyanto dkk .  (2019)  dan  Firdausi dkk .  (2020), abnormalitas  berupa  sirip  yang  rusak  seperti  robek  dan  geripis  mengindikasikan  adanya infestasi parasit.
Tabel 1 . Abnormalitas Morfologi Ikan Lele Organ yang diamati Keterangan Jumlah (ekor) Presentase (%) Bentuk tubuh  Terdapat luka di tubuh 72 90 Sirip Sirip perut hanya sebelah 25 31,3 Patil (sirip dada) hanya satu 23 28,8 Lainnya Warna kusam dan pucat 80 100 Warna insang pucat 73 91,3

## 3.2 Hematologi Darah Ikan
Berdasarkan  pengamatan  apusan  darah,  dapat  dilihat  sel  eritrosit  normal  dengan  ukuran bervariasi antara 10,08-10,27 μm berbentuk oval dengan inti sel kecil dan bulat (Gambar 1). Kerusakan yang terlihat  pada sampel  apusan darah adalah tear drop shaped , fusi, lacerated membrane , nuclear extrusion , blebbed nuclei , sperosit, lisis, sel eritrosit mengkerut (Gambar 1).  Kerusakan  sel  eritrosit  berupa Blebbed  nuclei menunjukkan  sel  yang  mengalami  sedikit pelipatan  dari  luar  ke  dalam  (evaginasi)  pada  lapisan  selubung  nukleus  yang  menyerupai mikronukleus yang dilekatkan oleh tangkai kecil seperti benang-benang halus (Braham dkk ., 2017).  Sel  eritrosit  yang  mengalami blebbed  nuclei juga  sudah  pernah  tercatat  sebelumnya oleh Walia dkk .  (2013); Kousar dan Javed (2015); Braham dkk . (2017); Selvi dan Alagesan (2017). Menurut Walia dkk . (2013), blebbed nuclei terjadi karena adanya nukleus muda pada tahap interfase dan diduga muncul karena kerusakan materi genetik oleh radikal bebas yang dihasilkan  oleh  toksikan. Blebbed  nuclei menunjukkan  adanya  kebocoran,  peningkatan aktivitas  mitokondria  dan  evaginasi  yang  relatif  kecil  dari  selubung  nukleus  yang  tampak mengandung eukromatin (Selvi dan Alagesan, 2017).
Menurut  Shahjahan dkk .  (2020), Tear  drop  shaped merupakan  kelainan  etritrosit  yang menunjukkan  perubahan  bentuk  yang  salah  satu  sisi  membrannya  tertarik  keluar  sehingga terlihat  seperti  puting.  Lebih  lanjut  ditambahkan  bahwa  fusi  yang  terjadi  pada  sel  eritrosit ditandai dengan keadaan dimana dua sel eritrosit mengalami perlekatan sehingga membentuk massa dan volume sel yang lebih berat. Kedua abnormalitas tersebut diduga dipengaruhi oleh suhu perairan, dimana semakin tinggi suhu air media pemeliharaan ikan, maka abnormalitas tersebut  akan  mengalami  peningkatan  yang  signifikan.  Kerusakan  sel  sperosit  ditandai dengan gejala penipisan dan penonjolan membran sel yang diduga karena cairan sitoplasma pada eritrosit mengalami tekanan dari dalam keluar sel (Syahrial dkk ., 2013).
Sel leukosit yang teramati pada sampel apusan darah adalah trombosit, monosit, eosinofil dan  limfosit  (Gambar  1).  Menurut  Hastuti  dan  Subandiyono  (2011),  adanya  kenaikan  sel leukosit  pada  sel  darah  ikan  merupakan  respon  dari  ikan  yang  mengalami  stres  yang diakibatkan oleh perubahan kondisi ataupun adanya kontaminan benda asing. Bentuk monosit dan limfosit sangat mirip, yang membedakannya adalah monosit mempunyai inti yang besar dn tidak berlobus. Adanya monosit pada preparat apusan darah menandakan adanya antibodi yang  sedang  diproduksi  karena  adanya  patogen  yang  menyerang  (Preanger dkk .,  2016). Selain monosit, limfosit juga menghasilkan antibodi.  Semakin bertambah usia hewan, maka jumlah limfosit akan semakin bertambah (Utama dkk ., 2017). Jika ditemukan suatu keadaan dimana  jumlah  limfosit  pada  darah  ditemukan  sangat  sedikit,  hal  tersebut  diakibatkan  oleh
adanya  peningkatan  sekresi  hormon  kortisol  akibat  stress  dan  lingkungan  yang  kurang  baik (Preanger dkk .,  2016).  Selanjutnya  Preanger dkk .  (2016),  menyebutkan  bahwa  sel  eritrosit jenis  eosinofil  sangat  jarang  terlihat  dalam  sirkulasi  darah  ikan.  keberadaan  eosinofil  dalam darah menunjukkan adanya infestasi parasit. Hidayaturrahmah (2015), menambahkan bahwa sel eosinofil berhubungan dengan aktifitas metabolisme dan kemampuan bertahan di atas air atau dalam keadaan hipoksia. Sedangkan trombosit berhubungan dengan respon tubuh dalam proses  penggumpalan  darah  dan  penyembuhan  luka,  dimana  jumlahnya  akan  meningkat apabali terdapat luka pada tubuh akibat infeksi (Pratiwi, 2019).
Gambar 1 . Hematologi Darah Ikan Lele. (A) E: eritrosit normal; Tds: tear drop shaped; F: fusi; Li: limfosit; Eo: eosinofil; Ls: lisis; Lm: lacerated membrane; Ne: nuclear extrusion; Tr: trombosit; Sp: sperosit; Mo: monosit. (B) Bn: blebbed nuclei; Emg: sel eritrosit mengkerut. Perbesaran 800x.

## 3.3 Histologi Insang Ikan
Berdasarkan  hasil  analisis  histopatologi  organ  insang,  terdapat  beberapa  kerusakan  jaringan, diantaranya  adalah  edema  lamella  sekunder,  vakuola  lamella  primer,  nekrosis  lamella  sekunder,
F Tds Ne Mo F Li Eo Tds Ls Eo Lm Sp Sp F Emg Sp Tds Sp Ne Tds Bn Tr E E F F Li
epithelium  lifting,  fusi  lamella  sekunder,  loss  of  lamella  structure  (hilangnya  struktur  lamella), hiperplasia dan keberadaan parasit (Gambar 2).

## v
Gambar 2. Histopatologi Insang Ikan lele. (A) Es: Edema lamella sekunder; Vp: vakuola lamella primer ; Ns: nekrosis lamella sekunder; P: parasit; El: epithelium lifting ; Fs: fusi lamella sekunder; Lls: Loss of lamella structure. Perbesaran 200x. (B) Hs: hiperplasia. Perbesaran 140x.
Penelitian serupa tentang histopatologi sebelumnya telah banyak dilakukan, salah satunya Juanda dan Edo (2018), melakukan pemeriksaan kerusakan jaringan pada organ insang ikan lele  yang  diambil  secara  acak  di  Kota  Kupang  dan  mencatat  beberapa  kerusakan  jaringan insang, diantaranya  adalah adanya  telangeaktasis,  nekrosis,  edema,  hiperplasia,  perhimpitan lamela  sekunder,  fusi,  hemoragi,  kongesti  dan  jaringan  yang  lepas.  Menurut  Pertiwi dkk . (2017), kejadian kerusakan pada jaringan insang dapat dimulai dari kejadian hiperplasia yang terjadi  secara  terus  menerus  yang  berlanjut  menjadi  fusi  kemudian  berlanjut  menjadi telangiektasis dan diakhiri dengan terbentuknya vakuola yang merupakan indikasi terjadinya nekrosis.
Pembengkakan sel atau edema yang terjadi pada lamella sekunder dapat ditandai dengan adanya  pembengkakan  pada  bagian  jaringan  lamella  sekunder  (Gambar  2A).  Edema  yang terjadi pada insang ikan lele diduga akibat dari adanya parasit yang menginfestasi ikan lele (Gambar  2).  Hal  tersebut  diperkuat  dengan  pendapat  Saputra dkk (2013)  dan  Strzyzewska dkk . (2016), bahwa edema pada lamella merupakan respon dari sel untuk melindungi diri dan bertahan  akibat  adanya  parasit  yang  menempel  pada  insang.  Maftuch dkk .  (2017), menambahkan bahwa edema yang terjadi pada jaringan lamella sekunder insang dapat juga diakibatkan adanya infiltrasi cairan ke dalam jaringan yang menyebabkan korosi yang terjadi pada lamella sekunder. Jika penyebab kejadian edema ini adalah akibat dari infiltrasi benda asing,  maka  akan  menyebabkan  sel  semakin  membengkak  dan  memicu  nekrosis  atau kematian  sel.  Respon  lebih  lanjut  dari  kejadian  edema  juga  dapat  berupa  pengangkatan  sel epitel  ( epithelium  lifting )  yang  mennyebabkan  gangguan  pada  fungsi  epitel,  yaitu  sebagai penangkap gas terlarut ( Jamin dan Erlangga, 2016; Juanda dan Edo, 2018).
Fusi yang terjadi pada lamella sekunder insang dapat ditandai dengan meleburnya jaringan lamella karena adanya kerusakan pada jaringan epitel lamella sekunder (Gambar 2). Menurut Utami dkk .  (2017),  fusi  pada  lamella  sekunder  dapat  mengakibatkan  lamella  menjadi  tidak berfungsi dengan sempurna karena lakuna yang berisi sel darah merah akan tertutup oleh sel-
Vp Es Ns P Fs P Fs P El Vp Ns Fs A B Lls Hs
sel epitel lamella sekunder yang rusak. Alifia (2013), menambahkan bahwa fusi pada jaringan lamella sekunder terjadi akibat berkurangnya keelastisan sel epitel dalam menyangga organel di  dalam  sel  sehingga  menyebabkan  terjadinya  patahan  pada  lamella.  Fusi  pada  lamella insang juga dapat mereduksi permukaan insang dan mengakibatkan kejadian hipoksia (Utami dkk ., 2017). Jika kejadian fusi semakin parah, maka akan menimbulkan  vakuola yang akan terlihat pada bagian sel-sel epithel lamella yang mengalami hiperplasia.
Hiperplasia  dapat  dikenali  dengan  adanya  jaringan  yang  membengkak  akibat  sel  yang bertumbuh semakin banyak (Gambar 2B). Menurut Juanda dan Edo (2018), hiperplasia pada jaringan  insang  dapat  dikenali  dengan  jaringan  yang  membengkak  dan  sudah  tidak  jelas bentuk  struktur sel  di  dalamnya, namun  masih memiliki  jaringan epithel yang membuatnya terlihat lebih besar dari kondisi normalnya. Kejadian hiperplasia pada insang ikan lele diduga akibat dari adanya infestasi parasit (Gambar 2). Hal tersebut didukung pendapat  Utami dkk . (2017), bahwa hiperplasia merupakan salah satu  usaha pertahanan diri yang dilakukan oleh ikan  terhadap  adanya  infestasi  benda  asing.  Hiperplasia  yang  terjadi  secara  terus  menerus dapat mengakibatkan sel mucus mengalami proliferasi sehingga lamella sekunder akan saling berhimpitan dan melekat (Juanda dan Edo, 2018).

## 4 KESIMPULAN DAN SARAN

## 4.1 Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang  telah  dilakukan,  dapat  disimpulkan  bahwa  ikan  lele yang  dibudidayakan  oleh  pembudidaya  lokal  di  Noekele,  Kabupaten  Kupang  Timur mengalami abnormalitas morfologi, kerusakan pada sel eritrosit dan kerusakan pada jaringan insang.  Abnormalitas  morfologi  yang  dialami  ikan  lele  antara  lain terdapat  luka  di  tubuh (90%), sirip perut hanya sebelah (31,3%), patil (sirip dada) hanya satu (28,8%), warna tubuh kusam dan pucat (100%), warna insang pucat (91,3%). Kerusakan sel eritrosit ikan lele yang teramati  pada  pengamatan  hematologi  pada  sampel  apusan  darah  adalah tear  drop  shaped , fusi, lacerated  membrane , nuclear  extrusion , blebbed  nuclei ,  sperosit,  lisis,  sel  eritrosit mengkerut.  Sedangkan  kerusakan  jaringan  insang  yang  dilihat  berdasarkan  analisis histopatologi  adalah  edema  lamella  sekunder,  vakuola  lamella  primer,  nekrosis  lamella sekunder, epithelium  lifting ,  fusi  lamella  sekunder, loss  of  lamella  structure (hilangnya struktur lamella), hiperplasia dan keberadaan parasit.

## 4.2 Saran
Hal yang dapat menjadi saran pada penelitian ini adalah diperlukan pemeriksaan kesehatan ikan berupa identifikasi ektoparasit dan endoparasit serta pengukuran parameter kualitas air pada media pemeliharaan ikan.

## DAFTAR RUJUKAN
Afriani,  D.  T.  2016.  Peranan  Pembenihan  Ikan  dalam  Usaha  Budidaya  Ikan. Jurnal  Warta Edisi 49. DOI: https://doi.org/10.46576/wdw.v0i49.158
Alifia, F. 2013. Histopatologi Insang Ikan Bandeng (Chanos chanos Forskall) Yang Tercemar Logam Timbal (Pb). Jurnal Balik Dewa, 4(1):38-45
Ariyanto, E., S. Anwar  dan Sofian. 2019. Indeks  Prevalensi dan  Intensitas Ektoparasit pada Ikan  Botia  ( Chromobotia  macracanthus )  di  Sumatera  Selatan. Jurnal  Ilmu-Ilmu
Perikanan dan Budidaya Perairan , 14(1):54-61. DOI: 10.31851/jipbp.v14i1.3370
Braham,  R.P.,  V.S.  Blazer,  C.H.  Shaw  dan  P.M.  Mazik.  2017.  Micronuclei  and  Other Erythrocyte  Nuclear  Abnormalities  in  Fishes  from  the  Great  Lakes  Basin,  USA. Enviromental and Molecular
Mutagenesis , 58(8):570-581. DOI: https://doi.org/10.1002/em.22123
Fazio,  F. 2019. Fish Hematology Analysis as An Important Tool of Aquaculture: A review.
Aquaculture , 500:237-242. DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.10.030
Firdausi,  A.P.,  Rahman,  R.  Mahadhika,  A.  Sumadikarta.  2020.  Protozoa  Ektoparasitik  pada Ikan  Koi Cyprinus  carpio di  Daerah  Sukabumi .  Jurnal  Akuakultur  Rawa  Indonesia , 8(1):50-57. DOI: https://doi.org/10.36706/jari.v8i1.11640
Hastuti,  S.  dan  Subandiyono.  2011.  Performa  Hematologis  Ikan  Lele  Dumbo  ( Clarias gariepinus )  dan  Kualitas  Air  Media  pada  Sistim  Budidaya  dengan  Penerapan  Kolam Biofiltrasi. Jurnal Saintek Perikanan , 6(2):1-5
Hidayaturrahmah.  2015.  Karakteristik  Bentuk  dan  Ukuran  Sel  Darah  Ikan  Betok  ( Anabas testudineus )  dan  Ikan  Gabus  ( Chana  sriata ). EnviroScienteae ,  11:88-93.  DOI: http://dx.doi.org/10.20527/es.v11i2.1628
Jamin dan Erlangga. 2016. Pengaruh Insektisida Golongan Organofosfat terhadap Benih Ikan Nila  Gift  ( Oreochromis  niloticus ,  Bleeker):  Analisis  Histologi  Hati  dan  Insang. Acta Aquatica , 3(2):46-53. DOI: https://doi.org/10.29103/aa.v3i2.324
Juanda,  S.J.  dan  S.I.  Edo.  2018.  Histopatologi  Insang,  Hati  dan  Usus  Ikan  Lele  ( Clarias gariepinus )  di  Kota  Kupang,  Nusa  Tenggara  Timur. Saintek  Perikanan ,  14(1):23-29. DOI:10.14710/ijfst.14.1.23-29
J,J.  Shobikhuliatul,  S.  Andayani,  J.  Couteau,  Y.  Risjani,  C.  MInier.  2013.  Some  Aspect  of Reproductive  Biology  on  the  Effect  of  Pollution  on  the  Histopathology  of  Gonads  in Puntius  Javanicus from  Mas  River,  Surabaya,  Indonesia. Journal  of  Biology  and  Life Science , 4(2):191-205. DOI: https://doi.org/10.5296/jbls.v4i2.3684
Kousar, S dan M. Javed. 2015. Studies on Induction of Nuclear Abnormalities in Peripheral Blood  Erythrocutes  of  Fish  Exposed  to  Copper. Turkish  Journal  of  Fisheries  and Aquatic Science , 15:897-886. DOI: http://dx.doi.org/10.4194/1303-2712-v15_4_11
Maftuch,  E.  Sanoesi,  I.  Farichin,  B.A.  Saputra,  L.  Ramdhani,  S.  Hidayati,  N.  Fitriyah  dan A.A.  Prihanto.  2017.  Histopathology  of  Gill,  Muscle,  Intestine,  Kidney  and  Liver  on Myxobolus sp. Infected Koi carp ( Cyprinus carpio ). Parasitic Diseases , 42(1):137-143. DOI: https://doi.org/10.1007/s12639-017-0955-x
Mustafa,  S.A.,  J.K.  Al-Faragi,  N.M.Salman  dan  A.J.  Al-Rudainy.  2017.  Histopathological Alterations in Gills, Liver and Kidney of Common Carp, Cyprinus carpio L. Exposed to Lead
Acetate. Adv.Anim.Vet.Sci , 5(9):371-376.
DOI: http://dx.doi.org/10.17582/journal.aavs/2017/5.9.371.376
Pardamean, E.S., H. Syawal dan M. Riauwaty. 2021. Identifikasi Bakteri Patogen pada Ikan Mas  ( Cyprinus  carpio )  yang  Dipelihara  dalam  Keramba  Jaring  Apung. Jurnal Perikanan dan Kelautan , 26(1):26-32. DOI: http://dx.doi.org/10.31258/jpk.26.1.26-32
Pertiwi,  S.L.,  Zainuddin  dan  E.  Rahmi.  2017.  Gambaran  Histologi  Sistem  Respirasi  Ikan Gabus ( Chana striata ). JIMVET , 1(3): 291-298. DOI:
https://doi.org/10.21157/jim%20vet..v1i3.3310
Pratiwi,  V.A.  2019.  Studi  Kondisi  Darah  Ikan  Lele  Lokal  ( Clarias  batrachus )  di  Sungai
Tapung Kiri dan Sungai Sail Provinsi Riau. Jurnal Skripsi Sekolah Sarjana Universitas Riau. Pekanbaru. 7 hlm
Preanger,  C.,  I.H.  Utama  dan  I.M.  Kardena.  2016.  Gambaran  Ulas  Darah  Ikan  Lele  di Denpasar Bali. Indonesia Medicus Veterinus , 5(2):96-103. DOI: https://ojs.unud.ac.id/index.php/imv/article/view/22876
Rustikawati, I. 2012. Efektivitas Ekstrak Sargassum sp. Terhadap Diferensiasi Leukosit Ikan Nila  (Oreochromis  niloticus)  yang  Diinfeksi  Streptococcus  iniae. Jurnal  Akuatika , III(2):125-134
Safratilofa.  2017.  Histopatologi  Hati  dan  Ginjal  Ikan  patin  (Pangasionodon  hypopthalmus) yang  diinjeksi  Bakteri  Aeromonas  hydrophila. Jurnal  Akuakultur  Sungai  dan  Danau , 2(2):83-88. DOI: http://dx.doi.org/10.33087/akuakultur.v2i2.21
Saputra,  M.H.,  N.  Marusin  dan  P.  Santoso.  2013.  Struktur  Histologis  Insang  dan  Kadar Hemoglobin Ikan asang (Osteochilus hasseltii C.V) di Danau Singkarak dan Maninjau, Sumatera
Barat. J. Bio . UA, 2(2):138-144.
DOI: https://doi.org/10.25077/jbioua.2.2.%25p.2013
Selvi,  A.T.  dan  P.  Alagesan.  2017.  Nuclear  Abnormalities  in  the  Blood  Erythrocytes  of African  Cat  Fish, Clarias  gariepinus Exposed  to  Aluminium  Chloride. Middle-East Journal of Scientific Research , 25(5):970-976. DOI: 10.5829/idosi.mejsr.2017.970.976
Sesques,  P.  dan  N.  A.  Johnson.  2017.  Approach  to  the  Diagnosis  and  Treatment  of  High- Grade  B-cell  Lymphomas  with  MYC  and  BCL2  and/or  BCL6  Rearrangements. BLOOD , 129(3):280-288. DOI:10.1182/blood-2016-02-636316
Shahjahan,  M.,  M.S.  Khatun,  M.M.  Mun,  S.M.Majharul  Islam,  M.  H.  Uddin,  M. Badruzzaman dan S. Khan. 2020. Nuclear and Cellular Abnormalities of Erythrocytes in  Response  to  Thermal  Stress  in  Common  Carp Cyprinus  carpio . Frontiers  in Physiology , 11:1-8. DOI: https://doi.org/10.3389/fphys.2020.00543
Syahrial, A. T.R. Setyawati dan S. Khotimah. 2013. Tingkat Kerusakan Jaringan Darah Ikan Mas  ( Cyprinus  carpio )  yang  Dipaparkan  pada  Media  Zn-Sulfat  (ZnSO4). Jurnal Probiont ,
2(3):181-185.
DOI:
http://jurnal.untan.ac.id/index.php/jprb/article/view/3892/3900
Strzyzewska, E., J. Szarek., dan I. Babinska. 2016. Morphological Evaluation of The Gills as a  Tool  in  The  Diagnostics  of  Pathological  Conditions  in  Fish  and  Pollution  in  The Aquatic  Environment:  a  review. Veterinarni  Medicina ,  61(3):  123-132.  DOI: http://dx.doi.org/10.17221/8763-VETMED
Utama, I.H., Siswanto dan C. Karami. 2017. Evaluasi Sitologis Darah Ikan Bandeng ( Chanos chanos )  di  Kecamatan  Alas-Nusa  Tenggara  Barat. Indonesia  Medicus  Veterinus , 6(5):428-435. DOI: 10.19087/imv.2017.6.5.428
Utami,  I.A.N.S.,  A.A.A.  Ciptojoyo  dan  N.  N.  Wiadnyana.  2017.  Histopatologi  Insang  Ikan Patin  Siam  ( Pangasius  hypophthalmus )  yang  Terinfestasi  Trematoda  Monogenea. Media Akuakultur , 12(1): 35-43. DOI: http://dx.doi.org/10.15578/ma.12.1.2017.35-43
Walia,  G.K.,  D.  Handa,  H.  Kaur  dan  R.  Kalotra.  2013.  Erythrocyte  Abnormalities  in  A Freshwater  Fish, Labeo  rohita Exposed  to  Tannery  Industry  Effluent .  International Journal of Pharmacy and Biological Science , 3(1):287-295