Efektivitas paparan spektrum cahaya lampu Light Emitting Diode (LED) terhadap pertumbuhan dan kualitas warna yuwana ikan badut,
Amphiprion percula (Lacèpède, 1802)
[The effectiveness of LED light spectrum exposure on growth and color performance of orange clownfish, Amphiprion percula (Lacèpède, 1802) juvenile]
Ris Dewi Novita 1  , Kukuh Nirmala 2 , Eddy Supriyono 2 , Idil Ardi 3
1 Program Studi Ilmu Akuakultur, Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor 2 Departemen Budidaya Perairan, FPIK-IPB Jl. Agatis, Kampus IPB, Dramaga, Bogor 16680 3 Balai Riset Budidaya Ikan Hias Jl. Perikanan No. 13 Pancoran Mas Kota Depok, Jawa Barat 16436
Diterima: 23 Desember 2018; Disetujui: 5 Februari 2019

## Abstrak
Ikan badut Amphiprion  percula merupakan ikan hias air laut yang diminati pasar global ikan hias karena memiliki daya tarik tersendiri pada warna jingga yang dimilikinya. Ikan badut hasil budi daya memiliki kualitas warna jingga yang  cenderung  memudar.  Penggunaan  manipulasi  spektrum  cahaya  dalam  sistem  budi  daya  dapat  memengaruhi perubahan  jumlah  kromatofor  yang  dapat  meningkatkan  warna  ikan  menjadi  terang.  Tujuan  penelitian  ini  adalah menentukan spektrum cahaya lampu LED yang tepat terhadap pertumbuhan dan kualitas warna yuwana ikan badut. Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap pada lima perlakuan dan tiga ulangan. Perlakuan terdiri atas empat jenis spektrum cahaya lampu LED dengan panjang gelombang berbeda yakni putih (P), merah (M), hijau (H) dan biru (B) dengan lama penyinaran 12 jam dan kontrol. Rerata panjang total awal ikan uji adalah 3,28±0,24 cm dan bobot 0,91±0,19 g. Hasil penelitian selama 60 hari pemeliharaan menunjukkan bahwa parameter respons fisiologis dan pertumbuhan terbaik adalah pada perlakuan lampu LED biru dengan kadar glukosa sebesar 40,00±2,65 mg dL -1 , kadar malondialdehyde ( MDA) sebesar 9,30±0,29 nmol mL -1 , laju pertumbuhan spesifik (LPS) sebesar 1,71±0,05% dan  efisiensi  pakan  (EP)  sebesar  78,23±1,97%. Parameter  kualitas  warna  terbaik  pada  perlakuan  lampu  LED  biru dengan skor dalam Toca color finder (TCF) mencapai warna jingga pada bagian dorsal, kaudal dan anal, red,green and blue (RGB) ratio pada warna bagian dorsal, kaudal dan anal masing-masing sebesar 64,59±1,00%, 68,12±0,74%, dan 72,56±0,20% serta jumlah kromatofor sebesar 346±10 sel/ 0,1 mm -2 . Spektrum cahaya lampu LED biru mengha- silkan pertumbuhan dan kualitas warna terbaik pada yuwana ikan badut Amphiprion percula .
Kata penting: Amphiprion percula , kualitas warna, spektrum cahaya lampu LED

## Abstract
Orange clownfish is one of the most desired marine ornamental fish by global market due to the orange color on it. One  obstacle of  the  clownfish  farming  is  the  changes  in  the  orange  color  on  clownfish.  Manipulation  of  the  light spectrum exposure may affect the amount of chromatophore, that can change the color of clownfish become brighter. The present study aimed at to determining an appropriate spectrum of LED light toward growth and color quality of Amphiprion  percula juvenile.  The  study  was  conducted  in  five  treatments  with  three  replications.  The  treatment consists of four types of LED light with different wavelengths, i.e., white (P), red (M), green (H) and blue (B) with 12 hours and control. Clownfish with an average body weight of 0.91±0.19 g and length of 3.28±0.24 cm were used in this study. The result after 60 days showed that the blue LED light give the best glucose levels of 40.00±2.65 mg dL - 1 ,  malondialdehyde  levels  of  9.30±0.29  nmol  mL -1 ,  specific  growth  rate  of  1.71±0.05%  and  feed  efficiency  of 78.23±1.97%. The best color quality parameters on blue LED light treatment with the Toca color finder (TCF) score reach the orange color on the dorsal, caudal and anal, RGB ratio of the color of the dorsal, caudal and anal each of 64.59±1.00%, 68.12±0.74% and 72.56±0.20% as well as the number of  chromatophore each of   346±10 cells/0.1 mm -2 . The spectrum blue LED light is able to result the growth and quality of best color for clownfish Amphiprion percula juvenile.
Keywords: Amphiprion percula, color quality, LED light spectrum

## Pendahuluan
Perkembangan  budi  daya  ikan  hias  air laut  di  Indonesia  terlihat  positif.  Data Interna-
tional  Trade  Centre (2017)  memperlihatkan
bahwa  kontribusi  Indonesia  untuk  nilai  ekspor ikan  hias  air  laut  pada  tahun  2016  berada  di
_____________________________  Penulis korespondensi
Alamat surel: risdewi@gmail.com
urutan ke tiga dunia, dengan nilai mencapai 7,68 juta dollar AS. Salah satu jenis ikan hias air laut Indonesia  yang  memiliki  nilai  jual  tinggi  yaitu dari famili Pomacentridae yang hidup di terum- bu karang (Wabnitz et al . 2003). Ikan badut ter- masuk  dalam  famili  Pomacentridae,  subfamili Amphiprionidae  yang  berasal  dari  perairan Samudra  Hindia  dan  Pasifik,  sampai  saat  ini terdapat  27  spesies  yang  telah  teridentifikasi (Fautin  &  Allen  1992).  Ikan  badut  termasuk ikan  hias  air  laut  yang  mudah  dibudidayakan (Gopakumar  2005).  Kondisi  demikian  dapat dilihat pada data produksi ikan badut hasil budi daya  di  Indonesia  pada  tahun  2016  yang  men- capai  333  ribu  ekor.  Jumlah  produksi  ini  me- nempati  posisi  teratas  dibandingkan  dengan jenis ikan hias air laut lainnya seperti kuda laut,
mandarinfish , banggai  cardinal  fish dan  ikan
blue devil (DJPB 2017).
Berbagai jenis ikan badut tersebut, dian- taranya  adalah Amphiprion  percula merupakan spesies ikan dari famili Pomacentridae yang ba- nyak  diminati  dan  populer  di pasar  global  ikan hias (Johnston et al . 2003). Warna jingga terang merupakan daya tarik jenis ikan hias ini (John- ston  2000)  dan  nilai  ekonomisnya  ditentukan berdasarkan kualitas warna jingga yang mendo- minasi  bagian  tubuhnya  (Yasir  &  Qin  2009). Nilai jual ikan hias ini per ekor berkisar antara 17,99–19,99 dollar AS (Barrier Reef Aquariums 2017;  Saltwaterfish  2017).  Kegiatan  budi  daya guna meningkatkan produksi ikan badut tersebut dalam  rangka  pemenuhan  permintaan,  namun masih terkendala kualitas warna.
Salah  satu  kendala  yang  dihadapi  pada kegiatan  budi  daya  ikan  badut  adalah  kualitas warna jingga yang memudar, apabila dibanding- kan dengan hasil tangkapan alam (Sembiring et al. 2013). Hal tersebut dapat disebabkan adanya
penurunan  jumlah  kromatofor  dan  penyebaran- nya  tidak  merata.  Kromatofor  merupakan  sel pigmen  yang  menyebar  di  seluruh  lapisan  sel epidermis kulit ikan dan berperan dalam pening- katan  atau  penurunan  tingkat  kecerahan  warna ikan (Oshima 2001). Salah satu yang memenga- ruhi  penyebaran  jumlah  sel  kromatofor  adalah akibat  dari stres  faktor  lingkungan  yakni peng- gunaan cahaya yang tidak tepat pada media pe- meliharaan.  Untuk  mengatasi  kendala  tersebut diperlukan perbaikan teknologi budi daya.
Peningkatan warna ikan badut budi daya dapat dilakukan dengan teknik manipulasi caha- ya pada sistem budi dayanya yang telah dilaku- kan  beberapa  penelitian.  Manipulasi  cahaya menggunakan  kombinasi  spektrum,  intensitas, dan  lama  paparan  yang  tepat,  dapat  memenga- ruhi  perubahan  penyebaran  jumlah  kromatofor, sehingga warna ikan menjadi lebih terang (Fujii 2000). Penggunaan cahaya buatan dalam media pemeliharaan dengan spektrum atau panjang ge- lombang  yang  tepat  dapat  memengaruhi  peru- bahan jumlah kromatofor (Oshima & Yokozeki 1999).  Salah  satu  teknologi  budi  daya  yang dapat  dilakukan  guna  memanipulasi  spektrum atau  panjang  gelombang  cahaya  adalah  dengan menggunakan  lampu Light  Emitting  Diode (LED). Penggunaan lampu LED dalam kegiatan budi  daya  memiliki  beberapa  kelebihan  diban- dingkan  dengan  lampu  jenis  lain.  Lampu  LED memiliki  efisiensi  energi  yang  lebih  tinggi  se- hingga  dapat  menghemat  biaya  dibandingkan dengan lampu jenis lain, daya tahan yang tinggi serta  ramah  lingkungan  dikarenakan  tidak mengandung merkuri (Migaud et al . 2007).
Hasil penelitian Aras et al . (2015) meng- gunakan LED merah, hijau, biru dan putih untuk melihat  pertumbuhan  dan  kualitas  warna  ikan botia  ( Chromobotia  macracanthus Bleeker).
Hasil  penelitian  tersebut  menunjukkan  bahwa lampu LED hijau dapat meningkatkan laju per- tumbuhan  harian  ikan  botia,  sedangkan  lampu LED  merah  mampu  meningkatkan  jumlah  sel kromatofor.  Hal  serupa  dihasilkan  dari  peneli- tian Gunawan (2017) dengan penggunaan lampu LED  merah  memberikan  performa  warna  ter- baik pada ikan gurami strain Padang Osphrone- mus  gouramy Lacepede  serta  lampu  LED  biru mampu  memberikan  laju  pertumbuhan  terbaik pada  ikan  gurami strain Padang.  Penelitian penggunaan lampu LED terhadap kualitas warna ikan  hias  di  Indonesia  sudah  banyak  dilakukan pada  ikan  hias  air  tawar  sedangkan  pada  ikan hias  air  laut  masih  kurang.  Penelitian  menggu- nakan lampu LED pada ikan hias air laut telah dilakukan,  namun  hanya  melihat  pengaruh  pe- ningkatan  kadar  antioksidan  sebagai  respons stres  oksidatif  dan  pertumbuhan  ikan Amphi- prion clarkii (Shin et al . 2011; 2012). Penelitian ini  bertujuan  menentukan  spektrum  cahaya lampu  LED  yang tepat untuk pertumbuhan dan peningkatan  kualitas  warna  yuwana  ikan  badut
Amphiprion percula .

## Bahan dan metode

## Tempat dan waktu penelitian
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  Fe- bruari  sampai  April  2018  di  Balai  Besar  Peri- kanan  Budidaya  Laut  Lampung.  Analisis  kadar glukosa  dilakukan  di  laboratorium  Pusat  Studi Satwa  Primata  Institut  Pertanian  Bogor,  kadar malondialdehyde (MDA)  dilakukan  di  labora- torium Departemen Biokimia dan Biologi Mole- kular  Universitas  Indonesia,  dan  histologi  ja-
ringan  ikan  di  laboratorium  Kesehatan  Ikan Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan  Institut Pertanian Bogor.

## Materi uji
Ikan  uji  yang  digunakan  adalah  yuwana ikan  badut Amphiprion  percula hasil  pembe- nihan dari Balai Besar Perikanan Budidaya Laut Lampung  dengan  rata-rata  panjang  total  3,28±- 0,24 cm dan bobot 0,91±0,19 g. Ikan uji dipeli- hara menggunakan akuarium berukuran 40 cm x 50 cm x 40 cm dengan volume air 50 L  dan pa- dat tebar 25 ekor per akuarium.

## Rancangan penelitian
Penelitian  dilakukan  menggunakan  Ran- cangan  Acak  Lengkap  yang  terdiri  atas  lima perlakuan dengan tiga ulangan. Perlakuan terdiri atas:  perlakuan  K  (kontrol  dengan  cahaya ruang),  perlakuan  P  (LED  putih),  perlakuan  M (LED merah), perlakuan B (LED biru) dan per- akuan H (LED hijau).

## Prosedur penelitian
Wadah  yang  digunakan  pada  penelitian ini  berupa  akuarium  sebanyak  lima  belas  buah dengan  penempatan  dilakukan  secara  acak. Seluruh  sisi  akuarium  dilapisi  dengan  plastik mulsa  guna  meminimalkan  pengaruh  cahaya luar.  Masing-masing  akuarium  dilengkapi  de- ngan  aerator  untuk  menyuplai  oksigen  dan sistem  sirkulasi.  Lampu  LED  yang  digunakan adalah  LED  3  mata  lampu  5050,  12  volt  yang terlebih dahulu diukur panjang gelombang spek- trum  cahayanya.  Panjang  gelombang  spektrum cahaya yang dihasilkan terlihat pada Tabel 1.
Tabel 1 Puncak panjang gelombang spektrum cahaya lampu LED yang digunakan Perlakuan Puncak panjang gelombang (nm) Lampu LED yang digunakan Aras et al . (2015) Kontrol (K) - - LED putih (P) 443 nm dan 539 nm 465 nm dan 550 nm LED merah (M) 615 nm 625 nm LED hijau (H) 521 nm 525 nm LED biru (B) 458 nm 470 nm
Lama penyinaran berlangsung selama 12 jam setiap hari selama 60 hari.  Pengatur  waktu dipasang pada stop kontak sehingga lampu me- nyala  otomatis  pukul  06.30  dan  padam  pukul 18.30. Akuarium diisi air dan didiamkan selama tiga  hari,  kemudian  dilakukan  penebaran  ikan uji dan diaklimatisasi selama tujuh hari. Ikan uji diberi  pakan  (protein  59,48%)  secara at  satia-
tion sebanyak tiga kali sehari pada pukul 07.00,
12.00  dan  17.00.  Penyiponan  dilakukan  setiap hari  sebelum  pemberian  pakan  yaitu  pada  pagi hari  dan  sore  hari  dengan  mengganti  1/3  dari volume  air  media  pemeliharaan.  Pengamatan dilakukan  dalam  periode  pemeliharaan  ikan selama 60 hari.

## Parameter penelitian
Parameter  penelitian  yang  diukur  meli- puti:  kadar  glukosa,  kadar malondialdehyde (MDA),  laju  pertumbuhan  spesifik,  bobot  mut- lak,  panjang  mutlak,  jumlah  konsumsi  pakan, efisiensi  pakan  serta  tingkat  sintasan.  Pengu- kuran  panjang  dan  penimbangan  bobot  ikan dilakukan setiap 14 hari sekali. Parameter yang berkaitan dengan kualitas warna antara lain nis- bah  warna  merah  pada red,  green  and  blue (RGB), skor toca color finder (TCF) dan meng- hitung jumlah sel kromatofor.
Kadar  glukosa  diukur  dengan  metode
Enzymatic Colorimetric Test GOD-PAP ( Gluco-
se Oxidase Para Aminophenazone ). Pengukuran kadar  glukosa  dilakukan  pada  awal  dan  akhir perlakuan dengan prinsip oksidasi glukosa oleh glukooksidase  (GOD)  menjadi  asam  glukonat dan H 2 O 2 . Selanjutnya H 2 O 2 direaksikan dengan 4-aminophenazon  dan  fenol  menghasilkan quinoneimine  yang  berwarna  merah  violet  dan H 2 O. Reaksi  ini dikatalisis oleh enzim peroksi- dase  (POD)  yang  terbentuk  equivalen  dengan glukosa sehingga warna yang terukur pada pro- duk quinoneimine akan sebanding dengan kadar glukosa.  Nilai  absorbansi  sampel  dan  standar diukur  dengan  spektrofotometer  pada  panjang gelombang  500  nm  dan  dihitung  menggunakan rumus:
i i
Keterangan: KG= kadar glukosa (mg dL -1 )
Pengukuran  kadar  MDA  dilakukan  pada awal  dan  akhir  perlakuan  dengan  metode  uji asam tiobarbiturat (TBA) secara spektrofometeri (Rio et  al .  2005).  Sebanyak  400  µL  sampel direaksikan  dengan  200  μ trichloroacetic  acid (TCA) 20%, kemudian dihomogenkan menggu- nakan  vorteks,  campuran  kemudian  disentrifu- gasi  dengan  kecepatan  6000  rpm  selama  lima menit.  Supernatan  yang  terbentuk  diambil  dan ditambahi  400  μL tiobarbiturat  acid (TBA) 0,67%.  Selanjutnya  mikrotube  dilapisi  dengan parafilm ,  kemudian  dipanaskan  pada  penangas 95-100 ºC  selama  10  menit,  dan  setelah  itu  di-
dinginkan  dengan  air.  Nilai  absorbansi  sampel dibaca  pada  panjang  gelombang  530  nm.  Hasil pengukuran  absorbansi tersebut  kemudian  dihi- tung  dengan  menggunakan  persamaan  regresi linier  yang  didapat  dari  kurva  standar  untuk mendapatkan  kadar  MDA  masing-masing sampel.
Keragaan warna diamati secara visual pa- da  awal  dan  akhir  pemeliharaan  dengan  meng- gunakan kamera digital Canon EOS 1100D . Me- tode  konversi gradasi  warna  dianalisis  menurut skala dan persentase menggunakan aplikasi  pe- rangkat lunak ImageJ yang berdasarkan modifi- kasi Kusumah et al . (2015). Pengamatan dilaku- kan  terhadap  tiga  titik  meliputi  warna  bagian dorsal, kaudal, dan anal ikan. Dari hasil penga- matan  keragaan  warna  secara  visual  dengan aplikasi  perangkat  lunak ImageJ ,  maka  akan diperoleh  persentase  nisbah  warna  merah  pada
red, green and blue (RGB).
Parameter  kualitas  warna  diukur  secara visual  dengan toca  color  finder (TCF)  edisi 1999  (Cemani  Toka,  Bogor,  Indonesia)  dilaku- kan  pada  awal  dan  akhir  pemeliharaan.  Pengu- kuran  dengan  TCF  sebagai  alat  pendekatan untuk  mengukur  warna  visual  kualitatif  pada bagian  dorsal,  kaudal,  dan  anal  ikan  dilakukan oleh  lima  orang  panelis.  Tiga  peringkat  warna yuwana  ikan  badut Amphiprion  percula dibuat menggunakan kode TCF 0513 hingga 0515, de- ngan skor berkisar dari 1 sampai 3 untuk warna kuning, jingga kekuningan, dan jingga (Meilisza 2018).
Penghitungan  jumlah  sel  kromatofor dilakukan  pada  awal  dan  akhir  pemeliharaan. Metode ini menggunakan teknik histologis yang mengacu  pada  penelitian  Aras et  al .  (2015).
Bagian  yang  diamati  adalah  lapisan  epidermis tubuh  ikan.  Preparat  histologi  diamati  menggu-
nakan  mikroskop  dengan  perbesaran  100  kali dan  didokumentasikan.  Setelah  itu  hasil  doku- mentasi  dianalisis  dengan  bantuan  perangkat lunak ImageJ untuk  menentukan  jumlah  sel kromatofor.
Sintasan  adalah  hasil  persentase  jumlah ikan  yang  hidup dari total ikan  yang dipelihara per  perlakuan.  Pengukuran  sintasan  ikan  pada penelitian  ini  menggunakan  rumus  sebagai berikut (Goddard 1996) :
N N 0 00
Keterangan:  SR=  sintasan/ Survival  rate (%),  N t = jumlah ikan pada akhir pengamatan, N o = jumlah ikan pada awal pengamatan
Laju  pertumbuhan  spesifik  merupakan laju  pertambahan  bobot  ikan  dalam  persen. Rumus  laju  pertumbuhan  spesifik  dinyatakan dalam persamaan sebagai berikut (Ricker 1979):
L L
L 0 00
Keterangan: LPS= laju pertumbuhan spesifik % hari -1 t = bobot  rata-rata ikan  waktu  ke  t  (g), o =  bobot rata-rata  ikan  pada  waktu  awal  (g),  t= l ama  pemeli- haraan (hari)
Pertambahan  bobot  (BM)  merupakan selisih  bobot rata-rata  akhir  dengan  bobot rata- rata  awal  pemeliharaan  (NRC  1983).  Pertam- bahan  bobot  dihitung  dengan  menggunakan persamaan sebagai berikut:
K         g    :  M                 h                g , rata-       k hi           ih           g ,                       -rata awal pemeliharaan (g)
Panjang total tubuh ikan diukur setiap 14 hari  dengan  menggunakan  milimeter  blok.  Per- tambahan  panjang  dihitung  dengan  mengguna- kan persamaan sebagai berikut (NRC 1983) :
PM = Ĺ t - Ĺ o
Keterangan:  PM=  pertambahan  panjang  (cm),  Ĺ t = panjang  rata-rata  akhir  pemeliharaan  (cm),  Ĺ o = panjang rata-rata awal pemeliharaan (cm)

## Jumlah konsumsi pakan (JKP) ikan badut
Amphiprion  percula dihitung  dengan  cara  me- nimbang jumlah pakan yang dikonsumsi selama penelitian.
Efisiensi pakan dihitung dengan menggu- nakan rumus Takeuchi (1988), yaitu:
00
Keterangan:  EP=  efisiensi  pakan  (%),  B t = biomassa ikan pada akhir pemeliharaan (g), B d = biomassa ikan yang  mati  selama  masa  pemeliharaan  (g),  B 0 = bio- massa  ikan  pada  awal  pemeliharaan  (g),  F=  jumlah pakan yang diberikan selama pemeliharaan (g)

## Pengukuran kualitas air
Parameter kualitas air yang diukur dalam penelitian ini meliputi suhu, pH, salinitas, oksi- gen terlarut, nitrit dan amonia. Pengukuran suhu air  dilakukan  setiap  hari,  sedangkan  salinitas, pH  dan  oksigen  terlarut  diukur  setiap  14  hari. Pengukuran  suhu  dilakukan  menggunakan  ter- mometer, pH air menggunakan pH meter, salini- tas  menggunakan  refraktometer,  dan  oksigen terlarut  menggunakan  DO  meter.  Pengukuran nitrit  dan  amonia  menggunakan  spektrofoto- meter pada awal dan akhir perlakuan.

## Analisis statistik
Data berupa parameter nilai kadar gluko- sa, kadar MDA, laju pertumbuhan spesifik, bo- bot,  panjang,  jumlah  konsumsi  pakan,  efisiensi pakan, sintasan, jumlah kromatofor, serta peng- ukuran  nisbah  warna  merah  pada  RGB  diana- lisis  menggunakan  sidik  ragam  (ANOVA)  de- ngan bantuan software SPSS versi 22. Uji lanjut Duncan dengan selang kepercayaan 95% dilaku- kan  apabila  terdapat  pengaruh  perlakuan.  Data pengukuran kualitas warna dengan TCF dilaku- kan secara deskriptif.

## Hasil
Kadar  glukosa  sebelum  perlakuan  me- nunjukkan  nilai  tinggi  sebesar  98,80±10,92  mg dL -1 .  Gambar  1  menunjukkan  penurunan  kadar glukosa pada semua perlakuan pada hari ke 30. Perlakuan B memiliki nilai kadar glukosa teren- dah pada hari ke 60 sebesar 40,00±2,65 mg dL -1 yang  berbeda  nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan K sebesar 56,67±4,04 mg dL -1 , namun tidak ber- beda  nyata  (P>0,05) dengan  perlakuan  H  sebe- sar  46,00±4,00  mg  dL -1 ,  P  sebesar  49,00±1,73 mg dL -1 dan M sebesar 49,33±8,74 mg dL -1 .
Keterangan:  K (kontrol dengan cahaya ruang), P (lampu LED putih), M (lampu LED merah), H (lampu LED  hijau)  dan  B  (lampu  LED  biru).  Huruf  yang  berbeda  pada  diagram  menunjukkan pengaruh perlakuan yang berbeda nyata (uji lanjut Duncan P<0,05).
Gambar 1.  Kadar glukosa yuwana ikan badut Amphiprion percula
a a a a a
b ab
ab a a 0 50 100 K P M H B K a da r g luk o sa ( m g dL -1 ) Perlakuan 0 hari 30 hari 60 hari
Kadar  MDA  sebelum  perlakuan  menun- jukkan  nilai  yang  tinggi  sebesar  38,73±0,84 nmol  mL -1 (Gambar 2). Pada hari ke 30 semua perlakuan kadar MDA cenderung turun dengan nilai terendah pada perlakuan B sebesar 16,10±
6,35 nmol mL -1 dan berbeda nyata (P<0,05) de- ngan perlakuan P sebesar 35,24±6,65 nmol mL -1
dan  H  sebesar  31,89±6,00  nmol  mL -1 ,  namun tidak berbeda nyata (P>0,05) dengan perlakuan M sebesar 18,46±2,70 nmol mL -1 dan K sebesar 26,43±4,96  nmol  mL -1 .  Pengamatan  pada  hari ke 60 menunjukkan nilai kadar MDA cenderung
turun  kembali  dengan  nilai  terendah  perlakuan B  sebesar  9,30±0,29  nmol  mL -1 berbeda  nyata (P<0,05) dengan perlakuan lainnya.
Tabel  2  menunjukkan  bahwa  perlakuan spektrum cahaya LED tidak ada perbedaan yang signifikan  terhadap  sintasan,  jumlah  konsumsi pakan dan efisiensi pakan (P>0,05), namun ber- pengaruh  nyata  (P<0,05)  terhadap  laju  pertum- buhan  spesifik  (LPS),  bobot  (B)  dan  panjang (P).  Nilai  LPS,  B  dan  P  perlakuan  B  berbeda nyata dengan perlakuan lainnya (P<0,05).
Keterangan:  K (kontrol dengan cahaya ruang), P (lampu LED putih), M (lampu LED merah), H (lampu LED  hijau)  dan  B  (lampu  LED  biru).  Huruf  yang  berbeda  pada  diagram  menunjukkan pengaruh perlakuan yang berbeda nyata (uji lanjut Duncan P<0,05).
Gambar 2.  Kadar malondialdehyde (MDA) yuwana ikan badut Amphiprion percula
Tabel 2  Pertumbuhan yuwana ikan badut Amphiprion percula Parameter (satuan) Perlakuan K P M H B SR (%) 82,67±8,33a 86,67±6,11a 92,00±4,00a 86,67±8,33a 93,33±6,11a LPS (% hari -1 ) 1,55±0,03a 1,54±0,05a 1,60±0,07a 1,61±0,02a 1,71±0,05b B (g) 1,39±0,05a 1,37±0,06a 1,47±0,11a 1,49±0,05a 1,62±0,06b P (cm) 1,27±0,03a 1,26±0,03a 1,32±0,08a 1,31±0,03a 1,41±0,05b JKP (g) 44,19±3,00a 43,87±3,79a 47,20±4,58a 47,10±1,16a 51,27±3,41a EP (%) 73,58±1,26a 74,41±1,23a 74,40±3,77a 74,88±2,55a 78,23±1,97a
Huruf  yang  berbeda  yang  mengikuti  angka  pada  baris  yang  sama  menunjukkan  pengaruh perlakuan  yang  berbeda nyata  (uji  lanjut  Duncan  P<0,05).  Nilai  yang  tertera  merupakan  nilai  rata-rata  dan  simpangan  baku.  SR:  sintasan, LPS: laju pertumbuhan spesifik, B: bobot, P: panjang, JKP: jumlah konsumsi pakan, EP: efisiensi pakan. K (kontrol dengan cahaya ruang), P (lampu LED putih), M (lampu LED merah), H (lampu LED hijau) dan B (lampu LED biru).
ab b a b a b c b b a 0 20 40 K P M H B K a da r M DA (nm o l m L -1 ) Perlakuan 0 hari 30 hari 60 hari
Jumlah  kromatofor  perlakuan  B,  M  dan H  pada  hari  ke  60  cenderung  naik  masing- masing  sebesar  346±10  sel/0,1  mm 2 ,  333±25 sel/0,1  mm 2 dan  316±7  sel/  0,1  mm 2 terlihat
pada  Gambar  3.  Perlakuan  B  memiliki  jumlah kromatofor yang berbeda nyata (P<0,05) dengan perlakuan  lainnya  namun  tidak  berbeda  nyata
(P>0,05) dengan perlakuan M.
Keterangan:   K (kontrol dengan cahaya ruang), P (lampu LED putih), M (lampu LED merah), H (lampu LED  hijau)  dan  B  (lampu  LED  biru).  Huruf  yang  berbeda  pada  diagram  menunjukkan pengaruh perlakuan yang berbeda nyata (uji lanjut Duncan P<0,05).
Gambar 3.  Jumlah kromatofor yuwana ikan badut Amphiprion percula
Tabel 3  Pengukuran kualitas warna yuwana ikan badut Amphiprion percula Perlakuan K P M H B Nisbah warna merah pada RGB (%) 0 hari (awal) Bagian dorsal 63,67±1,34 63,67±1,34 63,67±1,34 63,67±1,34 63,67±1,34 Bagian kaudal 66,62±1,44 66,62±1,44 66,62±1,44 66,62±1,44 66,62±1,44 Bagian anal 69,83±1,25 69,83±1,25 69,83±1,25 69,83±1,25 69,83±1,25 60 hari Bagian dorsal 62,43±0,13a  62,61±0,09a  63,73±1,14ab  63,16±0,11a 64,59±1,00b Bagian kaudal 65,08±1,30a  64,89±0,31a  66,76±1,52ab  66,15±0,47a 68,12±0,74b Bagian anal 69,38±0,69a  69,65±1,88a  70,95±0,36ab  70,67±0,53a 72,56±0,20b Skor TCF 0 hari (awal) Bagian dorsal 2 2 2 2 2 Bagian kaudal 2 2 2 2 2 Bagian anal 2 2 2 2 2 60 hari Bagian dorsal 2 2 3 3 3 Bagian kaudal 2 2 3 3 3 Bagian anal 2 2 3 2 3
Huruf  yang  berbeda  yang  mengikuti  angka  pada  baris  yang  sama  menunjukkan  pengaruh perlakuan  yang  berbeda nyata (uji lanjut Duncan P<0,05). Nilai yang tertera merupakan nilai rata-rata dan simpangan baku. K (kontrol dengan cahaya ruang), P (lampu LED putih), M (lampu LED merah), H (lampu LED hijau) dan B (lampu LED biru). Skor 1= kuning, skor 2= kuning kejinggaan, skor 3= jingga.
a a bc ab c 200 300 400 K P M H B J um la h k ro m a to fo r (s el / 0 ,1 m m 2 ) Perlakuan 0 hari 60 hari
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa pada hari ke 60 perlakuan spektrum cahaya LED memberikan  nilai  nisbah  warna  merah  pada RGB  ikan  badut Amphiprion  percula tertinggi pada  perlakuan  B  terlihat  pada Tabel 3  dengan persentase  bagian  dorsal  sebesar  64,59±1,00, kaudal  sebesar  68,12±0,74  dan  anal  sebesar 72,56±0,20,  namun  tidak  berbeda  nyata (P>0,05) dengan perlakuan M bagian dorsal se- besar  63,73±1,14,  kaudal  sebesar  66,76±1,52 dan anal sebesar 70,95±0,36.
Tabel  3  menunjukkan  skor  dalam  TCF pada hari ke 60 perlakuan B dan M memberikan
warna  ikan  lebih  baik  pada  bagian  dorsal, kaudal dan anal dibandingkan dengan perlakuan lainnya. Warna yang dicapai oleh ikan pada per- lakuan B dan M adalah  warna jingga (Skor 3). Hasil  pengamatan  secara  visual  kualitas  warna yuwana ikan badut Amphiprion  percula terlihat pada Gambar 4.
Parameter  fisik  kimiawi  air  yang  diukur selama penelitian  meliputi: suhu, oksigen terla- rut, pH, salinitas, amonia dan nitrit. Hasil peng- ukuran beberapa parameter kualitas air tersebut terlihat pada Tabel 4 dari awal hingga akhir pe- nelitian pada perlakuan spektrum cahaya LED.
Keterangan: A= ikan pada awal  sebelum perlakuan, K= ikan pada  kontrol cahaya ruang, P= ikan pada lampu LED putih, M= ikan pada lampu LED merah, H= ikan pada lampu LED hijau dan  B= ikan pada lampu LED biru.
Gambar 4. Hasil pengamatan secara visual kualitas yuwana ikan badut Amphiprion percula
K P H B A M
Tabel 4.  Nilai parameter fisik kimiawi air pada setiap perlakuan selama pemeliharaan Parameter Perlakuan K P M B H Suhu ( o C) 27,2-29,3 28,5-29,8 28,3-29,5 28,4-29,9 28,2-29,4 Oksigen terlarut (mg L -1 ) 4,84-5,90 4,69-6,07 4,49-5,63 4,60-5,76 4,80-5,94 pH 7,18-8,02 7,38-8,01 7,33-8,01 7,34-8,02 7,34-7,99 Salinitas (g L -1 ) 32-33 32-33 32-33 32-33 32-33 Amonia (mg L -1 ) 0,232-0,235  0,221-0,223  0,222-0,223  0,206-0,223  0,222-0,223 Nitrit (mg L -1 ) 0,075-0,078  0,075-0,078  0,075-0,078  0,076-0,078  0,075-0,078

## Pembahasan
Respons  stres  merupakan  respons  fisio- logis  yang  terjadi  pada  saat  ikan  memperbaiki homeostasis (Bonga 1997). Homeostasis adalah keadaan stabil yang dipertahankan melalui pro- ses  aktif  melawan  perubahan.  Stres  menyebab- kan  peningkatan  sekresi  kortisol  (glukokorti- koid),  sehingga  dapat  meningkatkan  produksi glukosa  (Kadarini  2009).  Glukosa  yang  tinggi akan  disimpan  oleh  tubuh  dalam  bentuk  gliko- gen melalui proses glikogenesis (Hamzah et  al.
2012). Peningkatan kadar glukosa menyebabkan peningkatan  produksi Reactive  Oxygen  Species (ROS) seperti superoksida (O 2 - ), radikal hidrok- sil (OH - ), serta hidrogen peroksida (H 2 O 2 ) (Per- matasari et  al .  2016).  Produksi  dan  akumulasi ROS  yang  tidak  dapat  diatasi  oleh  ikan  akan menyebabkan  terjadinya  stres  oksidatif  (Puteri 2016).  Peningkatan  ROS  akan  mengakibatkan terjadinya peroksidasi lipid, serta hasil peroksi- dasi  lipid  dalam  bentuk  peningkatan  MDA (Monaghan et al . 2009). Hal yang sama juga di- ungkapkan oleh Valavanidis et al. (2006) bahwa peningkatan kadar glukosa menyebabkan perok- sidasi  lipid  pada  membran  sel  meningkat  se- hingga akan menghasilkan produk akhir berupa MDA.
Kadar  glukosa  pada  hari  ke  60  pemeli- haraan  yuwana  ikan  badut Amphiprion  percula dengan  perlakuan  lampu  LED,  nilai  terendah
pada  perlakuan  B.  Kondisi  yang  sama  dengan kadar  MDA,  nilai  terendah  pada  perlakuan  B. Kondisi  demikian  diduga  penggunaan  lampu LED  biru  memiliki  nilai  spektrum  panjang gelombang  yang  relatif  pendek  dengan  puncak panjang gelombang 458 nm. Nilai spektrum ter- sebut merupakan nilai yang efektif bagi yuwana ikan  badut  dalam  menghambat  stres  oksidatif. Kondisi  tersebut,  kadar  glukosa  tidak  menga- lami  peningkatan  sehingga  ROS  dapat  diatasi serta tidak terjadi peroksidasi lipid dalam bentuk peningkatan MDA. Hasil tersebut sesuai dengan penelitian  Shin et  al. (2011)  dan  Choi et  al.
(2012) bahwa kadar glukosa dan MDA terendah dengan  penggunaan  spektrum  cahaya  lampu LED biru.
Setiap spesies ikan memiliki kemampuan respons  yang  berbeda  terhadap  rangsangan spektrum cahaya lampu yang diterima. Menurut Oshima  (2001)  kemampuan  respons  tersebut terbagi  menjadi  dua  respons  yaitu  respons  pri- mer  dan  respons  sekunder.  Respons  primer  da- pat  dikatakan  sebagai nonvisual  response yang artinya kromatofor  merespons  secara  langsung, sedangkan  respons  sekunder  yang  bertindak adalah penglihatan visual dengan dikontrol oleh sistem  saraf  (Fingerman  1965).  Penglihatan visual  merupakan  sensorik  utama  yang  diguna- kan  oleh  ikan  diurnal  dalam  aktivitas  mencari makan.  Kemampuan  respons  ikan  terhadap
spektrum  cahaya  dipengaruhi  oleh  susunan  sel fotoreseptor  pada  retina  mata.  Sel  fotoreseptor terdiri  atas  kon  dan  rod.  Kon  merupakan  sel kerucut  yang  bertanggung  jawab  pada  pengli- hatan  terang  dan  pembedaan  warna,  sedangkan rod  merupakan  sel  batang  yang  bertanggung jawab pada penglihatan cahaya yang redup. Ikan
Amphiprion  percula memiliki sensitive  cones pada warna RGB (Cronin et al. 2014). Oleh ka- rena  itu,  ikan  badut  diduga  memiliki  sistem visual yang mampu mendapatkan makanan pada cahaya merah, hijau,  dan biru. Hasil penelitian menunjukkan bahwa perlakuan B memiliki jum- lah konsumsi pakan tertinggi. Nilai laju pertum- buhan spesifik, bobot, dan panjang juga terting- gi  pada  perlakuan  B  (Tabel  2).  Hal  ini  sejalan dengan  hasil penelitian  Shin et  al .  (2012) pada masa  pemeliharaan  ikan Amphiprion  clarkii , pertumbuhan terbaik juga pada perlakuan lampu LED biru. Hal tersebut diduga perlakuan B me- miliki  nilai  kisaran  panjang  gelombang  yang sama  dengan  kondisi  alam  yuwana  ikan  badut, serta  seperti  yang  telah  dikemukakan  bahwa dengan  perlakuan  B  terjadi  penurunan  kadar glukosa  dan  MDA.  Pada  kondisi  demikian  yu- wana  ikan  badut  dapat  aktif  mencari  makan, sehingga  memiliki  pertumbuhan  terbaik.  Kon- disi tersebut juga sejalan dengan hasil penelitian Villamizar et  al .  (2009)  yang  menyatakan  bah- wa  perlakuan  lampu  LED  biru  dengan  panjang gelombang  435-500  nm  memiliki  pertumbuhan dan perkembangan larva ikan European sea bass ( Dicentrarchus  labrax )  terbaik  dengan  aktif mencari makan dibandingkan dengan perlakuan lainnya.  Sintasan  antarperlakuan  menunjukkan tidak ada perbedaan yang signifikan terlihat pa- da  Tabel  2.  Penelitian  ini  menunjukkan  bahwa perlakuan  lampu  LED  tidak  memengaruhi  sin- tasan yuwana ikan badut. Hal ini sejalan dengan
penelitian  Aras et  al .  (2015)  yang  melaporkan bahwa  perlakuan  spektrum  cahaya  LED  tidak berpengaruh  nyata  terhadap  sintasan  yuwana ikan botia.
Bagian  tubuh  ikan  badut  yang  bewarna jingga merupakan hasil dari sel pigmen eritrofor dan  xantofor  (Hawkes  1974).  Menurut  Oshima (2001), panjang gelombang cahaya yang efektif bagi  ikan  yang  memiliki  sel  pigmen  eritrofor dan xantofor adalah  panjang gelombang cahaya biru,  hijau  dan  merah.  Seperti  yang  telah  dike- mukakan sebelumnya bahwa respons primer ter- hadap  cahaya  yang  artinya  kromatofor  meres- pons  secara  langsung.  Kromatofor  merupakan sel  pigmen  yang  bertanggung  jawab  dalam perubahan  warna  pada  berbagai  spesies.  Sel kromatofor yang terdapat pada ikan, antara lain melanofor  untuk  pigmentasi  hitam  atau  coklat, xantofor untuk pigmentasi kuning, eritrofor un- tuk pigmentasi merah, leukofor untuk pigmenta- si  putih,  iridofor  untuk  pigmentasi  metalik  dan berhubungan  dengan  perubahan  warna,  serta cyanofor untuk pigmentasi biru (Fujii 2000). Sel kromatofor terletak di bagian dermis, di lapisan atas, dan di lapisan bawah. Setiap spesies memi- liki kapasitas warna yang dapat berubah dengan beberapa kombinasi sel kromatofor serta propor- si  yang  berbeda  bertujuan  untuk  beradaptasi dengan  lingkungan  atau  disebut  dengan  proses kamuflase (Tume et  al . 2009). Cahaya merupa- kan salah satu faktor lingkungan yang dapat me- mengaruhi migrasi pola pigmen ikan (Kusuma- wati  2011).    Hal  serupa  juga  diutarakan  oleh Evans et  al .  (2014), bahwa  pergerakan  sel  pig- men  yang  disebabkan  oleh  spektrum  cahaya pada  media  pemeliharaan  dapat  mengakibatkan perubahan warna. Ho et al . (2013) juga menya- takan  bahwa  perubahan  kualitas  warna  ikan berhubungan  dengan  adanya  sel  pigmen  atau
kromatofor  yang  terdapat  pada  lapisan  epider- mis.  Perlakuan  B  dan  M  memberikan  hasil kualitas  warna  serta  jumlah  kromatofor  terbaik dibandingkan dengan perlakuan lainnya terlihat pada  Gambar  3.  Kondisi  demikian  diduga  ber- hubungan  dengan  jumlah  pakan  yang  dimakan oleh ikan pada perlakuan B berbeda dibanding- kan perlakuan lainnya, namun sama dengan per- lakuan  M  dan  H  sehingga  karotenoid  sebagai pembentuk  pigmen  warna  atau  sel  kromatofor yang tidak mampu disintesis dari tubuh ikan dan hanya  terpenuhi  dari  pakan  menjadi  terpenuhi. Hal tersebut juga sejalan dengan Oshima (2001) bahwa  pada  pemaparan  panjang  gelombang cahaya biru dan merah terjadi agregasi atau pe- numpukan sel pigmen, sedangkan pada panjang gelombang hijau cenderung terdispersi.
Ikan badut dengan warna jingga merupa- kan ikan berpigmen eritrofor dan xantofor. Ikan dengan  pigmen  tersebut  kurang  efektif  pada panjang  gelombang  cahaya  putih  dan  cahaya ruang  (kontrol)  sehingga  respons  kromatofor dispersi  (Oshima  2001).  Perlakuan  B  dan  M menghasilkan  ikan  dengan  kualitas  warna  ter- baik  terlihat  pada  Tabel  3.  Hal  tersebut  sesuai dengan hasil penelitian Kasai & Oshima (2006) bahwa kualitas warna terbaik pada cahaya pan- jang gelombang rendah biru dan panjang gelom- bang  tinggi  merah  pada  ikan  neon  tetra  ( Para- cheirodon innesi ). Hasil yang sama juga dipero- leh Aras et al. (2015) yang membuktikan perla- kuan  cahaya  LED  merah  (M)  mampu  mening- katkan penampilan warna merah pada ikan botia
( Chromobotia  macracanthus )  dengan  pening- katan  persentase  warna  merah  pada  komponen RGB.
Kualitas  air  selama  pemeliharaan  masih termasuk kondisi yang layak (Tabel 4). Kondisi demikian  dikarenakan  dilakukan  penyiponan
setiap hari pada pagi dan sore hari. Nilai suhu di media pemeliharaan terukur berkisar antara 27- 30 o C. Nilai tersebut merupakan kisaran suhu air yang optimal untuk pemeliharaan ikan (Supriyo- no et al . 2010). Nilai oksigen terlarut hasil peng- ukuran berada di atas nilai yang disarankan yai- tu di atas 4 mg L -1 (Boyd 2003). Nilai pH pada semua  perlakuan  memiliki  nilai  pH  berkisar antara 7-8,1. Kisaran nilai pH tersebut merupa- kan  kisaran  masih  dalam  batas  toleransi  untuk pertumbuhan  dan  sintasan  ikan  (Madinawati et al. 2009).  Nilai  salinitas  yang  terukur  selama pemeliharaan  yaitu  sebesar  32-33  g  L -1 .  Nilai tersebut merupakan  nilai salinitas  yang optimal utuk  pemeliharaan  ikan  (Lubis et  al .  2013).
Nilai  nitrit  yang  terukur  berkisar  antara  0,075- 0,078  mg  L -1 .  Nilai  tersebut tidak  membahaya- kan  bagi  ikan  dikarenakan  masih  dalam  batas tolerasi  untuk  budidaya  ikan  yaitu  kurang  dari 0,1  mg  L -1 (Sawyer et  al. 2003).  Nilai  amonia tidak  membahayakan  ikan  karena  kurang  dari 0,3 mg L -1 (Boyd & Tucker 1998).

## Simpulan
Spektrum cahaya lampu LED biru meng- hasilkan  pertumbuhan  dan  kualitas  warna  ter- baik pada yuwana ikan badut .

## Daftar pustaka
Aras AK, Nirmala K, Soelistyowati DT, Sudar- to.  2015.  Manipulasi  spektrum  cahaya terhadap pertumbuhan dan kualitas warna yuwana  ikan  botia Chromobotia  macra- canthus (Bleeker, 1852). Jurnal  Iktiologi Indonesia , 15(1): 45-55
Barrier  RA.  2017.  Sustainable  aquatics  Clown- fish. [Internet]. [diunduh pada 31 Agustus 2017].  Tersedia  pada  http://www.barrier reefaquariums.com/productcart/pc/Sustai nable_Aquatis_Clownfish_c459.htm?pag eStyle=h&ProdSort=19&page=2&idCate gory=459&viewAll=yes
Bonga SEW. 1997. The stress response in fish.
Physiologic Reviews , 7(3): 591-625
Boyd CE, Tucker CS. 1998. Pond  Aquaculture Water  Quality  Management .  Springer Science+Business  Media.  New  York
(US): 700 p
Boyd  CE.  2003.  Guidelines  for  aquaculture effluent  management  at  the  farm-level.
Aquaculture , 226(1-4): 101– 112
Choi  CY,  Shin  HS,  Choi  YJ,  Kim  NN,  Lee  J, Kil GS. 2012. Effect of LED light spectra on  starvation-induced  oxidative  stress  in the cinnamon clownfish Amphiprion  me- lanopus . Comparative  Biochemistry  and
Physiology , Part A, 163(3-4): 357-363
Cronin TW, Johnsen S, Marshall J, Warrant EJ.
2014. Visual  Ecology . Princeton  Univer- sity Press. Oxford(UK): 405 p
[DJPB] Direktorat Jenderal Perikanan Budidaya. 2017. Statistik  Produksi  Budidaya  Ikan Hias Indonesia . Jakarta
Evans  DH,  Claiborne  JB,  Currie  S.  2014. The Physiology  of  Fishes  4 ed .  CRC  Press. New York (US). 441 p
Fautin DG, Allen GR. 1992. Field guide to ane- mone fishes and their host sea anemones. [Internet].  [diunduh  pada  31  Desember 2018].  Tersedia  pada  http://www. http://eqzotica.ucoz.ru/_ld/0/9_ANEMO
NES.pdf
Fingerman  M.  1965.  Chromatophores.
Physio- logic Reviews , 45(2): 296-339
Fujii R. 2000. The Regulation of motile activity in  fish  chromatophores. Pigment  Cell Research , 13(5): 300-319
Goddard  S.  1996. Feed  Management  in  Inten- sive  Aquaculture .  Chapman  and  Hall.
New York (US): 194 p
Gopakumar  G.  2005.  Marine  ornamental  fish culture  status,  constraints  and  potential. Ramamurthy S, Alagaraja K, Vivekanan- dan E, Mohanraj G, Sreenivasan PV, Ra- jagopalan S (Editor). Proceedings. Ocean Life Food and Medicine Expo 2004. India 27-29  February  2004.  Aquaculture Foundation of India. pp. 347-359
Gunawan BK. 2017. Manipulasi spektrum caha- ya  lampu  LED  terhadap  respons  fisiolo- gis dan kinerja pertumbuhan ikan gurami strain Padang Osphronemus  gouramy
Lacepede. Tesis .  Sekolah  Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor. 40 hlm
Hamzah M, Suprayudi MA, Utomo NBP, Mana- lu W. 2012. Pertumbuhan dan daya tahan tubuh juvenil ikan kerapu bebek ( Cromi- leptes altivelis ) yang diberi pakan dengan penambahan  selenometionin.
Agriplus , 22(3): 241-248
Hawkes JW. 1974. The structure of fish skin II. The chromatophore unit. Cell and Tissue Research , 149(2): 159–172
Ho  ALFC,  M  Nicole,  Bertran  O,  Lin  J.  2013. Dietary  esterified  astaxanthin  effects  on dermal  coloration  and  chromatophore physiology  in  Spinecheek  Anemonefish,
Premnas  biaculeatus . Journal  of  the World Aquaculture Society , 44(1): 76-85
International  Trade  Centre.  2017. Trade  Statis- tics  for  International  Business  Develop- ment . [Internet]. [diunduh  pada 31 Agus- tus 2017]. Tersedia pada http://trademap. org/Country_SelProduct_TS.aspx?nvpm=
1|||||030119|||6|1|1|2|2|1|2|1|1
Johnston  G.  2000.  Effect  of  feeding  regimen, temperature  and  stocking  density  on growth and survival of juvenile clownfish ( Amphiprion  percula ). Thesis .  Master  of Science of Rhodes University. 90 p
Johnston G, Kaiser H, Hecht T, Oellermann  L. 2003.  Effect  of  ration  size  and  feeding frequency  on  growth,  size  distribution and  survival  of  juvenile  clownfish,
Amphiprion  percula . Journal  of  Applied Ichthyology , 19(1): 40-43
Kadarini T. 2009. Pengaruh salinitas dan kalsi- um  terhadap  sintasan  dan  pertumbuhan benih  ikan  Balashark  ( Balanthiocheilus melanopterus ) Tesis .  Sekolah  Pascasar- jana, Institut Pertanian Bogor. 83 hlm.
Kasai  A,  Oshima  N.  2006.  Light-sensitive motile  iridophores  and  visual  pigments the  neon  tetra, Paracheirodon  innesi . Zoological Science , 23(9): 815-819
Kusumah RV, Cindelaras S, Prasetio AB. 2015. Keragaan  warna  ikan  clown  Biak ( Amphiprion percula )  populasi  alam  dan budidaya  berdasarkan  analisis  gambar digital. Jurnal  Riset  Akuakultur ,  10(3): 345-355
Kusumawati D. 2011. Kajian gen pengkode pola pigmen dan profil protein pada ikan badut
hitam  ( Amphiprion percula ). Tesis .
Universitas Brawijaya, Malang. 76 hlm
Lubis MZ, Pujiyati S, Mujahid M. 2013. Penga- ruh anemon ( Heteractis magnifica ) terha- dap  vitalitas  ikan  badut  ( Amphiprion ocellaris ) untuk  meminimalisasi penggu- naan  karang  hidup  pada  akuarium  laut buatan. Jurnal  Teknologi  Perikanan  dan Kelautan , 4(2): 149-154 Madinawati,  Ndobe  S,  Gamgulu  A.  2009.  Per- tumbuhan  ikan  kardinal  banggai  ( Ptera- pogon  kauderni )  yang  dipelihara  pada salinitas  yang  berbeda  dalam  wadah terkontrol. Jurnal  Akuakultur  Indonesia ,
8(2): 193-198
Meilisza N. 2018. Kualitas warna, pertumbuhan, dan  status  kesehatan  ikan  rainbow kurumoi  ( Melanotaenia  parva )  dengan suplementasi  karotenoid  dalam  pakan Disertasi .  Sekolah  Pascasarjana,  Institut Pertanian Bogor. 133 hlm
Migaud H, Cowan M, Taylor J, Ferguson HW. 2007. The effect of spectral  composition and  light  intensity  on  melatonin,  stress and retinal damage in postsmolt Atlantic salmon, Salmo salar . Aquaculture,
270(1): 390–404
Monaghan  P,  Mercalfe  NB,  Torres  R.  2009. Oxidative stres as a  mediator of life his- tory  trade-offs:  mechanisms,  measure- ments  and  interpretation  ( Review  and Synthesis ). Ecology Letters , 12(1): 75-92
[NRC] National Research Council. 1983. Nutri- ent  Requirement  of  Warmwater  Fishes and  Shellfishes . National  Academy  of
Science. Washington DC (US): 102 p
Oshima N, Yokozeki A. 1999. Direct control of pigment  aggregation  and  dispersion  in tilapia erythrophores by light.
Zoological Science ,16(1): 51–54
Oshima  N.  2001.  Direct  reception  of  light  by chromatophores  of  lower  vertebrates.
Pigment Cell Research , 14(5): 312-319
Permatasari  S,  Utomo  NBP,  Nirmala  K.  2016. Evaluasi  vitamin  E  pada  pakan  terhadap penurunan  nilai  malondialdehid  hati  dan akumulasi  logam  timbal  pada  ikan  nila ( Oreochromis
niloticus ) (Linnaeus, 1758). Jurnal  Iktiologi  Indonesia ,  16(3): 251-258
Puteri ATED. 2016. Penambahan minyak ceng- keh Syzygium  aromaticum dalam  pakan untuk  meningkatkan  pertumbuhan  dan status  kesehatan  ikan  bawal Colossoma macropomum. Tesis .  Sekolah  Pasca- sarjana, Institut Pertanian Bogor. 35 hlm
Ricker WE. 1979. Growth rates and models. In : Hoar WS, Randall DJ,  Brett JR (Editor).
Fish  Physiology, volume  VIII,  Bioener- getics and growth, Academic Press. New York (US). pp. 677-743
Rio  DD,  Stewart  AJ,  Pellegrini  N.  2005.  A review  of  recent  studies  on  malondial- dehyde  as  toxic  molecule  and  biological marker of oxidative stress. Nutrition, Me- tabolism,  and  Cardiovascular  Diseases , 15(4): 316-328
Saltwaterfish.  2017.  Clownfish.  [Internet].  [di- unduh pada  31 Agustus 2017]. Tersedia pada  https://www.saltwaterfish.  com/ category-saltwater-fish_clownfish
Sawyer  CN,  McCarty  PL,  Parkin  GF.  2003.
Chemistry for Environmental Engineering  and  Science  5 th .  McGraw
Hill Book Company. Tokyo. 752 p
Sembiring  SBM,  Setiawati  KM,  Hutapea  JH, Subamia W. 2013. Pewarisan pola warna ikan  Klon  Biak, Amphiprion  percula . Jurnal  Ilmu  dan  Teknologi  Kelautan Tropis , 5(2): 343-351
Shin HS, Lee J, Choi CY. 2011. Effects of LED light  spectra  on  oxidative  stress  and  the protective role of melatonin in relation to the daily rhythm of the yellowtail clown- fish, Amphiprion  clarkii . Comparative Biochemistry  and  Physiology .  Part  A. 160(2): 221-228
Shin HS, Lee J, Choi CY. 2012. Effect of LED light spectra on the growth of the yellow- tail  clownfish, Amphiprion clarkii . Fisheries Science , 78(3): 549-556
Supriyono E, Budiyanti, Budiardi T. 2010. Res- pon  fisiologi  benih  ikan  kerapu  macan
Epinephelus fuscoguttatus terhadap penggunaan  minyak  sereh  dalam  trans- portasi tertutup dengan  kepadatan tinggi.
Indonesian  Journal  of  Marine  Sciences , 15(2): 103-112
Takeuchi  T.  1988.  Laboratory  Work  Chemical Evalution  of  Dietary  Nutrients, In :
Watanabe  T  (ed).  Fish  Nutrition  and Mariculture. Department of Aquatic Bio-
science,  Tokyo  University  of  Fisheries. pp. 179-225
Tume  RK,  Sikes  AL,  Tabrett  S,  Smith  DM.
2009. Effect of background colour on the distribution  of  astaxanthin  in  black  tiger prawn  ( Penaeus  monodon ):  Effective method  for  improvement  of  cooked colour. Aquaculture , 296(1-2): 129-135
Valavanidis  A,  Vlahogianni  T,  Dassenakis  M, Scoullos M. 2006. Molecular biomarkers of oxidative stress in aquatic organisms in relation to toxic environmental pollutants.
Ecotoxicology and Environmental Safety , 64(2): 178–189 Villamizar N, Alcazar AG, Vazquez FJS. 2009. Effect of light spectrum and photoperiod on the growth, development and survival of European sea bass Dicentrarchus labrax larvae.
Aquaculture , 292(1-2): 80– 86
Wabnitz C, Taylor M, Green E, Razak T. 2003.
From Ocean to Aquarium. UNEP World Conservation Monitoring Centre.
Cambridge (UK). 64 p
Yasir I, Qin JG. 2009. Impact of background on color performance of false Clownfish,
Amphiprion ocellaris , Cuvier. Journal of the World Aquaculture Society, 40(6): 724-734