ISSN 2085-2916  e-ISSN 2337-3652 Tersedia daring http://jai.ipb.ac.id J. Agron. Indonesia, April 2021, 49(1):75-81 DOI: https://dx.doi.org/10.24831/jai.v49i1.33914

## PENDAHULUAN
Pepaya  ( Carica  papaya L.)  tipe  sedang  dan  kecil sudah sangat digemari oleh masyarakat Indonesia sejak satu
dekade silam. Keunggulan pepaya dengan tipe sedang dan kecil  diantaranya  memiliki  ukuran  yang  hanya  setengah dari pepaya biasa sehingga dapat dikonsumsi sekali habis dan  didukung  dengan  rasanya  yang  manis  (Sobir,  2009). Permintaan buah pepaya tipe ini semakin meningkat seiring dengan meningkatnya pendapatan dan kesadaran masyarakat terhadap manfaat pepaya bagi kesehatan tubuh.

## Sterilisasi dan Pertumbuhan
In Vitro Tunas Aksilar Pepaya Kultivar Callina dan Caliso

## Sterilization and In Vitro Propagation of Axillary Shoots of Callina and Caliso Papaya Cultivars
Rahmi Fajri 1 , Darda Efendi 2,3* , dan Diny Dinarti 2
1 Program Studi Pemuliaan dan Bioteknologi Tanaman, Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor
2 Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor (IPB University), Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680, Indonesia
3 Pusat Kajian Hortikultura Tropika,  Institut Pertanian Bogor (IPB University), Kampus IPB Baranangsiang Jl. Raya Pajajaran, Bogor 16144, Indonesia
Diterima 29 Desember 2020/Disetujui 26 Maret 2021

## ABSTRACT
Papaya medium and small types have been very popular in Indonesia since a decade ago. Most seed-derived papaya plants make a little profit because of heterogeneity and genetic variation due to cross-pollination, so that in vitro culture is needed. The research was conducted at the Tissue Culture Laboratory of the Center of Tropical Horticulture Studies, IPB University, from November 2018 to January 2020. The explants were axillary shoots of papaya cultivars Callina and Caliso which were 2 weeks old. The experiment was set up in a factorial randomized complete block design. This study consisted of two experiments: a) the first experiment aimed to determine the effect of sterilization methods, with the source of explants (greenhouse and field) and sterilization methods (M1, M2, M3, and M4) as factors, and b) the second experiment aimed to optimize the BAP and GA 3 concentration on shoots proliferation, using the concentrations of BAP 0.0, 0.5, 1.0, 1.5, and 2.0 mg L -1 and GA 3 0.0, 0.3, and 0.4 mg L -1 . The results showed that the explants from the greenhouse on M4 sterilization method produced the lowest contamination levels of 19.9% for Caliso and 29.9% for Callina. The best media to produce optimum shoot elongation were BAP 0.5 mg L -1 and GA 3 0.3 mg L -1 for Caliso, and BAP 0.5 mg L -1 and GA 3 0.4 mg L -1 for Callina with an average height of 1.6 and 1.8 cm, so that that shoots can be transferred to the rooting stage.
Keywords: Benzyl Amino Purine, Carica papaya, contamination, gibberellic acid, sterilization

## ABSTRAK
Pepaya tipe sedang dan kecil sudah digemari di Indonesia sejak satu dekade lalu. Sebagian besar tanaman pepaya yang diperbanyak dari biji menghasilkan profit yang rendah karena heterogenitas dan variasi genetik yang diakibatkan oleh penyerbukan silang, sehingga diperlukan kegiatan secara kultur in vitro. Penelitian dilakukan di Laboratorium Kultur Jaringan Pusat Kajian Hortikultura Tropika (PKHT) IPB, Bogor, dari November 2018 hingga Januari 2020. Eksplan merupakan tunas aksilar pepaya kultivar Callina dan Caliso umur 2 minggu. Penelitian dirancang secara faktorial dalam lingkungan Rancangan Acak Kelompok (RAK). Penelitian ini dibagi menjadi dua percobaan: a) Percobaan pertama bertujuan untuk mengetahui pengaruh metode sterilisasi dengan faktor sumber eksplan (rumah kaca dan lapangan) dan metode sterilisasi (M1, M2, M3, dan M4), dan b) Percobaan kedua bertujuan untuk optimalisasi konsentrasi BAP dan GA 3 pada pertumbuhan tunas dengan konsentrasi BAP 0.0, 0.5, 1.0, 1.5, dan 2.0 mg L -1 , dan konsentrasi GA 3 0.0, 0.3, dan 0.4 mg L -1 . Hasil penelitian menunjukkan bahwa eksplan dari rumah kaca pada sterilisasi metode M4 menghasilkan tingkat kontaminasi terendah yaitu 19.9% untuk Caliso dan 29.9% untuk Callina. Media terbaik untuk menghasilkan tinggi tunas optimum adalah BAP 0.5 mg L -1 dan GA 3 0.3 mg L -1 untuk Caliso dan BAP 0.5 mg L -1 dan GA 3 0.4 mg L -1 untuk Callina dengan tinggi rata-rata 1.6 dan 1.8 cm, sehingga tunas dapat dipindahkan ke tahap pengakaran.
Kata kunci: Asam giberelat, Benzyl amino purine, Carica papaya, kontaminasi, sterilisasi
Pusat  Kajian  Hortikultura  Tropika  (PKHT)  telah melakukan pengembangan  varietas tanaman pepaya unggul sejak tahun 2000. Terdapat beberapa kultivar unggul yang telah  dihasilkan  diantaranya  Caliso  dan  Callina.  Pepaya Caliso yang merupakan salah satu kultivar unggulan lokal asal Kalimantan yang masuk dalam kategori ukuran buah kecil  (19.5-21.4  cm)  dan  Callina    merupakan  varietas unggulan  nasional  yang  termasuk  dalam  kategori  buah ukuran sedang (23-24 cm).
Perbanyakan  tanaman  papaya  pada  umumnya dilakukan  dengan  biji,  namun tipe  seks  pepaya  yang ditumbuhkan  melalui  benih  baru  dapat  ditentukan  setelah tanaman berumur 6 bulan atau munculnya bunga pertama (Roy et  al., 2012).  Selain  itu  persilangan  antartanaman menghasilkan segregasi dengan proporsi seks yang berbeda- beda, sehingga mengakibatkan terjadinya variasi terhadap produktivitas,  kualitas,  dan  bentuk  buah  pepaya  (Chan et al., 2002). Pengembangan protokol perbanyakan pepaya kultivar Caliso  dan  Callina  secara in  vitro perlu  dilakukan  untuk mendapatkan  propagula  yang  banyak,  seragam  dan true to  type .  Keberhasilan  perbanyakan  secara in  vitro dapat menunjang  penyediaan  bibit  pepaya  yang  banyak,  cepat dan  berkualitas  untuk  para  petani  pepaya.  Keuntungan pemanfaatan proliferasi tunas aksilar yaitu tunas lebih stabil secara  genetik  dan  sangat  sedikit  atau  tidak  ada  variasi genetik  (Ngezahayo  dan  Liu,  2014).  Induksi  proliferasi tunas  aksilar  telah  berhasil  dilakukan  pada  pepaya,  tetapi tingkat keberhasilannya masih sangat rendah (Al-Shara et al. 2018).  Permasalahan  ini  disebabkan  oleh  kontaminasi mikroba  bakteri  endogen,  terutama  bila  eksplan  berasal dari tanaman dewasa yang ditanam di lapangan dan tingkat proliferasi yang rendah (Caple et al ., 2016). Studi sterilisasi tunas aksilar pepaya telah dilaporkan oleh  Wu et  al. (2012)  dan  Hervani et  al. (2018).  Kedua peneliti  menggunakan  antibiotik  rifampicin  300  mg  L -1 dengan  cara  merendam  eksplan  sebelum  ditanam  untuk mengurangi  kontaminasi  pada  kultur  tunas  pepaya  yang berasal  dari  lapangan.  Terdapat  eksplan  yang  bebas kontaminasi  meskipun  hasilnya  belum  memuaskan.  Oleh sebab itu, perlu dilakukan modifikasi teknik sterilisasi pada eksplan yang berasal dari lapangan dan rumah kaca.
Tahapan  multiplikasi  tunas  dapat  dilakukan  dengan menambahkan zat pengatur tumbuh dari golongan sitokinin secara  tunggal  atau  dikombinasikan  dengan  golongan auksin). Dari dua jenis sitokinin (BAP dan kinetin), maka BAP terbaik dalam merespon regenerasi tunas dibandingkan dengan kinetin jika dikombinasikan dengan NAA (Nguyen et al ., 2018). Setargie et al. (2015) menyatakan bahwa jumlah tunas terbanyak diperoleh dari media MS yang diperkaya dengan 1 mg L -1 BAP dan 0.5 mg L -1 NAA. Berbeda dengan Bindu (2015) yang jumlah tunas terbanyak diperoleh pada kombinasi  0.5  mg  L -1 BAP  dan  0.1  mg  L -1 NAA  pada kultivar  CO-5.  Perbedaan  tersebut  dimungkinkan  karena perbedaan genotipe dan eksplan yang digunakan. Wu et al . (2012) melaporkan bahwa tunas yang dihasilkan dari tahap perbanyakan belum dapat dimasukan pada tahap pengakaran
karena memiliki tunas yang pendek dan daun kerdil. Selain itu  Ramesh et  al., 2018  juga  menyatakan  bahwa  tanpa penambahan GA 3 tunas pepaya gagal memanjang, sehingga penambahan  GA 3 sangat  diperlukan  untuk  memacu pertumbuhan  dan  pemanjangan  tunas.  Kombinasi  ZPT terbaik untuk menginduksi pemanjangan tunas adalah BAP 0.25 mg L -1 dan GA 3 0.3 mg L -1 ( Wu et al., 2012, Caple et al., 2016). Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh metode sterilisasi dan pertumbuhan tunas aksilar pepaya  Caliso  dan  Callina  pada  kombinasi  BAP  ( Benzyl Amino Purine ) dan GA 3 ( Gibberellic Acid ).

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan  November 2018  sampai  Januari  2020  di  Laboratorium  Pusat  Kajian Hortikultura  Tropika  (PKHT)  IPB.  Bahan  tanam  adalah eksplan  dari  tunas  aksilar  pepaya  kultivar  Caliso  dan Callina  dengan  ukuran  0.5-1  cm.  Persiapan  penanaman dilakukan dengan menyemai dua benih pepaya per lubang dalam polybag dan dua bulan kemudian bibit dipindahkan ke  lapangan  dan  rumah  kaca.  Setelah  4-5  bulan  muncul bunga  pertama  tanaman  pepaya. Tanaman  pepaya  yang dipilih berjenis kelamin hermaprodit. Selanjutnya dilakukan pemotongan  tajuk  pepaya  hingga  menyisakan  batang dengan  tinggi  80-100  cm  dari  tanah.  Dua  minggu  setelah pemotongan tajuk, tunas aksilar yang tumbuh dari batang pohon pepaya dan dapat dipanen untuk dijadikan eksplan atau bahan tanam.

## Sterilisasi Tunas
Percobaan  dilaksanakan  secara  terpisah  pada  dua kultivar  pepaya  yaitu  Caliso  dan  Callina.  Rancangan percobaan disusun berdasarkan Rancangan Acak Kelompok (RAK) faktorial, dengan faktor pertama yaitu sumber asal eksplan (lapangan dan rumah kaca) dan faktor kedua adalah metode sterilisasi (M1, M2, M3, dan M4) maka terdapat 8 kombinasi perlakuan yang setiap perlakuan diulang 10 kali, sehingga terdapat 80 satuan percobaan. Satu unit percobaan merupakan satu botol kultur yang berisi 4 eksplan.
Perlakuan sterilisasi pada tunas aksilar pepaya terdiri dari empat metode yaitu: (1) M1 (Metode Dasar) merupakan metode  modifikasi  dari  penelitian  Hervani et  al. (2018), dimana tunas aksilar yang telah diambil kemudian direndam dalam  larutan  surfaktan  2  mL  dalam  500  mL  air  selama 30 menit lalu diairi dengan air mengalir selama 60 menit. Kemudian  eksplan  diambil  dan  direndam  kembali  dalam larutan yang sudah diberi benlate dan agrept masing-masing 2 mg L -1 selama 60 menit pada gelas ukur dan diletakkan pada  inkubator  bergoyang  ( shaker ).  Proses  sterilisasi selanjutnya  dilakukan  di  dalam  laminar  yaitu  pembilasan sebanyak  3  kali  dengan  aquadest  steril  kemudian  diberi perlakuan  sterilisasi  dengan  NaOCl  bertingkat  yaitu  30% selama  5  menit,  15%  selama  15  menit  dan  5%  selama  5 menit. Setelah perlakuan dengan NaOCl kemudian dibilas dengan  aquadest  steril  sebanyak  5  kali  dan  kemudian
direndam  dengan  menggunakan  antibiotik  rifampicin 2 g L -1 selama 15 menit. (2) M 2 yaitu metode dasar yang sebelumnya didahului dengan penyemprotan tunas aksilar pada  pohon  pepaya  dengan  alkohol  70%  sebanyak  1 liter  untuk  30  tanaman  sebelum  pengambilan  eksplan. (3)  M 3 yaitu  metode  dasar  yang  sebelumnya  didahului dengan  penyemprotan  tunas  aksilar  pada  pohon  pepaya dengan benlate dan agrept masing-masing  1  gr  L -1 untuk 30  tanaman  pada  sore  hari  sebelum  pengambilan  eksplan pada pagi hari berikutnya. (4) M4 yaitu metode dasar yang dilengkapi  dengan  perlakuan  penyemprotan benlate dan agrept masing-masing 1 g L -1 untuk 30 tanaman pepaya pada sore hari sebelum pengambilan tunas aksilar dan dilakukan perendaman eksplan yang telah dipanen pada aquadest steril dengan suhu rendah (4-8 o C) selama 60 menit. Tunas aksilar yang telah disterilisasi kemudian ditanam pada media inisiasi tunas pepaya yaitu MS yang diperkaya dengan 1.0 mg L -1 BAP dan 0.5 mg L -1 NAA (Wardani et al. , 2019). Setelah 4 minggu di media inisiasi lalu disubkultur pada media dengan komposisi yang sama selama 4 minggu, kemudian tunas yang beregenerasi dari eksplan dipindahkan ke  media  perlakuan  BAP  dan  GA 3 pada  percobaan  ke-2. Pengamatan dilakukan setiap dua minggu sekali selama 8 minggu  dengan  variabel  yang  diamati  adalah  persentase kontaminasi tunas dan jumlah eksplan hidup.

## Pertumbuhan Tunas Aksilar Pepaya dengan Penambahan Konsentrasi BAP dan GA
3
Percobaan  dilaksanakan  secara  terpisah  pada  dua kultivar  pepaya  yaitu  Caliso  dan  Callina.  Rancangan percobaan yang digunakan adalah rancangan acak kelompok faktorial  dengan  waktu  penanaman  sebagai  kelompok. Faktor  pertama  yaitu  konsentrasi  BAP  yang  terdiri  dari  5 taraf yaitu 0.0; 0.5; 1.0; 1.5; dan 2.0 mg L -1 . Faktor kedua yaitu konsetrasi GA 3 terdiri dari 3 taraf yaitu 0.0; 0.3 dan 0.4 mg L -1 . Terdapat 15 kombinasi perlakuan dengan 4 kali ulangan,  sehingga  total  menjadi  60  botol  unit  percobaan. Satu unit percobaan merupakan satu botol kultur yang berisi 2 eksplan.
Tunas yang digunakan sebagai eksplan adalah tunas bebas  kontaminasi  dari  percobaan  pertama  yang  berumur 8 minggu. Tunas yang siap dipindahkan minimal memiliki tinggi tunas 0.5 cm dan 3 helai daun. Selanjutnya eksplan diinkubasi pada ruang kultur dengan waktu terang 16 jam dan gelap 8 jam pada suhu 22±2 o C. Eksplan disubkultur setiap dua minggu, dimana tunas hasil subkultur pertama menjadi eksplan  untuk  subkultur  selanjutnya  hingga  subkultur  ke empat. Pengamatan  dilakukan  setiap  dua  minggu  sekali (sebelum  disubkultur)  selama  10  minggu  dengan  variabel yang diamati yaitu jumlah tunas per eksplan, tinggi tunas per eksplan dan jumlah daun per eksplan.
Data  yang  diperoleh  dalam  pengamatan  kemudian diolah  dengan Microsoft  Excel  2016 dan dianalisis keragamannya  (ANOVA)  dengan  program Statistical Analysis  Software (SAS)  versi  9.1.  Hasil  ANOVA  yang berbeda  nyata  kemudian  diuji  lanjut  dengan Duncan Multiple Range Test (DMRT).

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Tingkat Kontaminasi Kultur
Hasil  pengamatan  pada  perlakuan  metode  sterilisasi menunjukkan  bahwa  tingkat  kontaminasi  tertinggi  pada tunas  yang  berasal  dari  lapangan.  Persentase  kontaminasi tertinggi  mencapai  100%  untuk  kedua  kultivar  pepaya asal lapangan dan 80% untuk tunas asal rumah kaca pada sterilisasi  metode  dasar  (M 1 ).  Eksplan  asal  rumah  kaca memiliki  lingkungan  tumbuh  tanaman  lebih  terkontrol baik dari penyinaran, kelembaban, pengaruh hujan dan dari serangan  hama  penyakit.  Kontaminasi  terendah  diperoleh pada  metode  sterilisasi  M4  untuk  seluruh  kultivar  asal rumah kaca dengan kisaran 20-30% (Gambar 1).
Perlakuan sterilisasi dengan metode dasar tidak efektif dilakukan  karena  perlakuan  dengan  metode  dasar  tidak optimal mengurangi kontaminasi. Meskipun bahan sterilan yang digunakan mengandung sabun, NaOCl dan rifampicin. Prosedur  prasterilisasi  dan  sterilisasi  dapat  mengurangi kontaminasi,  Benazir et  al. (2013)  juga  mengemukakan bahwa kontaminasi dapat diminimalkan dengan melakukan dua tahap sterilisasi.
Penyemprotan alkohol 70% yang kemudian dilanjutkan dengan metode dasar pada tunas aksilar pepaya (M 2 ) kurang efektif  karena  eksplan  banyak  mengalami  kerusakan sehingga  warna  berubah  menjadi  putih  dan  kehitaman sampai  mengalami  kematian.  Perlakuan  penyemprotan benlate dan agrept masing-masing 1 g L -1 sehari sebelum pengambilan  eksplan  (M 3 )  dapat  menurunkan  tingkat kontaminasi  hingga  mencapai  20-45%  pada  eksplan  asal rumah kaca, sedangkan pada eksplan asal lapangan tingkat kontaminasinya  masih  tinggi  dengan  persentase  70-76%. Metode M4 (metode dasar yang dilengkapi dengan perlakuan penyemprotan benlate dan agrept pada  sore  hari  sebelum pengambilan  tunas  aksilar  dan  dilakukan  perendaman eksplan pada aquadest steril bersuhu 4-8 o C) cukup efektif menurunkan  kontaminasi  dengan  persentase  kontaminasi akhir mencapai 19.9% pada kultivar Caliso dan 29.9% pada kultivar Callina. Hal ini diduga karena perendaman dengan air  steril  bersuhu  4-8 o C  dapat  mengurangi  aliran  getah
1 0 20 40 60 80 100 M1 M2 M3 M4 M1 M2 M3 M4
Caliso
Callina Pe rse nt ase k on ta mi na si (%) Lapangan Rumah Kaca
Gambar 1. Persentase kontaminasi pada kultur in vitro tunas aksilar pepaya  kultivar Caliso dan Callina asal lapangan dan rumah  kaca  pada  empat  perlakuan  metode  sterilisasi. Bar±S.E.
1 0 20 40 60 80 100 M1 M2 M3 M4 M1 M2 M3 M4
Caliso
Callina Pe rse nt ase k on ta mi na si (%) Lapangan Rumah Kaca 1 0 20 40 60 80 100 M1 M2 M3 M4 M1 M2 M3 M4 Caliso Callina Pe rse nt ase k on ta mi na si (%) Lapangan Rumah Kaca Rumah kaca Lapangan
tunas  pepaya  yang  diperkirakan  menjadi  salah  satu  sebab terjadinya kontaminasi.
Bakteri endogen telah dilaporkan menjadi salah satu permasalahan  utama  pada  kultur  jaringan  tunas  pepaya yang sulit dihindari karena bakteri telah berasosiasi dengan tanaman sehingga sulit dideteksi pada awal inisiasi (Thomas dan Kumari, 2010, Wu et al ., 2012). Perendaman eksplan dengan  larutan  rifampicin  2  g  L -1 selama  15  menit  pada perlakuan sterilisasi menjadi hal penting untuk mengurangi kontaminasi  akibat  bakteri.  Gejala  kontaminasi  oleh bakteri  endogen  tunas  pepaya  muncul  setelah  dilakukan proses subkultur atau setelah proses pemisahan clum tunas. Eksplan yang berasal dari lapangan lebih banyak mengalami kontaminasi tetapi perbedaan kultivar tidak mempengaruhi persentase kontaminasi.
Eksplan  yang  telah  dimultiplikasi  membutuhkan penanganan lebih lanjut untuk bisa disiapkan kelapangan, salah  satunya  dengan  menginduksi  perpanjangan  tunas (elongasi).  Hal  ini  bertujuan  agar  tunas  kokoh  sehingga saat  memasuki  tahapan  aklimatisasi  planlet  akan  mampu berfotosintesis.  Tunas-tunas  pepaya  yang  terbentuk  pada fase induksi dan multiplikasi memiliki ukuran yang pendek, sehingga  perlu  dilakukan  penginduksian  pemanjangan tunas.
Selama eksplan pada media inisiasi dan multiplikasi 1.0  mg  L -1 BAP    dan  0.5  mg  L -1 NAA,  tunas  pepaya mengalami proliferasi dengan waktu rata-rata 3-4 minggu dengan laju multiplikasi rata-rata 3 tunas per eksplan dalam waktu  8  minggu.  Tunas  yang  tumbuh  merupakan  hasil inisiasi tunas pepaya yang kemudian dilakukan pemisahan dari clum tunas.  Dari  pemisahan  tunas  tersebut  diperoleh 48 tunas Caliso asal lapangan, 112 tunas Caliso asal rumah kaca, 48 tunas Callina asal lapangan dan 100 tunas Callina asal rumah kaca. Total tunas hasil dari lapangan dan rumah kaca  digabung  berdasarkan  kultivar  untuk  selanjutnya dijadikan eksplan untuk Percobaan 2.

## Pertumbuhan Kultivar Caliso
Respon tinggi tunas pada kultur tunas pepaya Caliso perlakuan  BAP  0.0,  0.5,  1,  1.5,  atau  2  mg  L -1 berbeda pada  perlakuan  GA 3 dengan  konsentrasi    0,  0.3,  dan  0.4 mg  L -1 .  Gambar  2A  menunjukkan  bahwa  perlakuan  BAP dikombinasikan dengan GA 3 0.4 mg L -1 membentuk kurva kubik dengan persamaan y = 0.933x 3 - 2.542x 2 + 1.552x + 1.668 dan R² = 0.791 dengan tinggi tunas maksimum sebesar 2.3  cm.  Secara  morfologi  tunas  pepaya  Caliso  perlakuan BAP 2.0 mg L -1 dan GA 3 0.4 mg L -1 memiliki warna hijau pucat dengan daun yang menebal dan berwarna putih. Hal ini menunjukkan gejala keracunan BAP karena tunas terpapar BAP pada konsentrasi tinggi waktu yang lama. Setargie et al. (2015)  telah  mengkonfirmasi  bahwa  penggunaan  BA 2 mg L -1 menyebabkan perubahan bentuk pada morfologi tunas dan daun in vitro pepaya varietas Maradol. Berbeda dengan tunas yang diperoleh pada perlakuan BAP 0.5 mg L -1 dan GA 3 0.3 mg L -1 yang memiliki rata-rata tinggi tunas berkisar 1.6 cm dengan bentuk  yang kompak  serta daun berwarna  hijau,  sehingga  tunas  dapat  dipindahkan  pada media  pengakaran.  Hal  ini  sesuai  dengan  informasi  oleh Wu et  al. (2012)  yaitu  kriteria  tinggi  tanaman  yang  siap untuk  dipindahkan  ke  tahap  pengakaran  minimal  1.5  cm dan  Setargie et  al. (2015)  dimana  tunas  yang  siap  untuk dipindahkan pada media pengakaran memiliki tinggi  1.0- 1.8 cm dan berkualitas baik.
Jumlah  tunas  tidak  dipengaruhi  oleh  faktor  tunggal ataupun  interaksi  antara  BAP  dan  GA 3 .  Hal  ini  mungkin disebabkan oleh ketidakseragaman respon dari setiap eksplan dan  periode  subkultur  yang  terlalu  singkat  yaitu  2  MST. Perlakuan subkultur dengan periode 2 MST diharapkan agar pertumbuhan tunas meningkat akan tetapi sistem regenerasi tanaman  pepaya  lambat  ( slow  growing )  yang  ditandai dengan  munculnya  pertambahan  tunas  pertama  setelah 4  MST.  Tunas  dapat  mengalami  stagnasi  pertumbuhan 1
y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5
2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5 2 Ju m lah d au n pe pay a
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4)
Gambar 2.  Respon (A) tinggi tunas dan (B) jumlah daun pada eksplan pepaya kultivar Caliso pada perlakuan BAP 0.0, 0.5, 1, 1.5, dan 2 mg L -1 pada tingkat GA 3 0, 0.3, dan 0.4 mg L -1 pada umur 10 MST A B GA 3 0 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5 2 Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) GA 3 0.4 1
y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) Poly. (GA 3 0.3) 1
y = 0.9333x
3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4)
GA 3 0.3 1
y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m) Konsentrasi BAP (mg L -1 )
GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5 2 Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) Poly. (GA 3 0) Poly. (GA 3 0.4) GA 3 0 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227
0 10
20 30
0 0.5 1 1.5
2 Ju m lah d au n pe pay a
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) GA 3 0.4 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) Poly. (GA 3 0.3) 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4)
GA 3 0.3 1
y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5
2
Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) Poly. (GA 3 0) Poly. (GA 3 0.4)
karena tindakan subkultur yang berlebihan. Samanmalie et al. (2017) menyatakan bahwa subkultur tunas pepaya baik dilakukan dengan frekuensi 4 minggu.
Jumlah  daun  umur  10  minggu  pada  perlakuan  BAP 0.5 mg L -1 dan GA 3 0.3 mg L -1 (Gambar 2B) efektif untuk mendorong  pertumbuhan  jumlah  daun  total  dibandingkan perlakuan  lainnya.  Meskipun  GA 3 secara  tunggal tidak  berpengaruh  karena  fungsinya  tidak  mendukung pembentukan daun akan tetapi memacu pemanjangan daun. Daun  pepaya  yang  baik  memiliki  karakteristik  memiliki ukuran sesuai dengan tunasnya dan tidak menggulung atau membuka sempurna.

## Pertumbuhan Kultivar Callina
Interaksi  BAP  0.5  mg  L -1 dan  GA 3 0.4  mg  L -1 menghasilkan    tinggi    tunas    optimum    1.8    cm    dengan membentuk pola y = 1.533x 3 - 4.714x 2 + 3.645x + 1.052 dan  R²  =  0.787  (Gambar  3B).  Menurut  Wu et  al .  (2012) tinggi tunas yang baik untuk dimasukkan tahap pengakaran minimal  1.5  cm.  Berdasarkan  kriteria  tersebut  maka kombinasi perlakuan BAP 0.5 mg L -1 dan GA 3 0.4 mg L -1 dapat  menghasilkan tunas yang memenuhi kriteria untuk dimasukkan ke tahap pengakaran.
Komposisi  media  MS  dengan  BAP  0.5  mg  L -1 dan  GA 3 0.3 mg L -1 merupakan  media  terbaik dalam pembentukan tunas dengan rata-rata 2.6 tunas per eksplan pada  10  MST  (Tabel  1).  Jumlah  tunas  yang  dihasilkan dari  penelitian  ini  lebih  kecil  dibandingkan  dengan  hasil
penelitian Wu et al. (2016) dan yang mencapai 4 tunas per eksplan pada kombinasi media 0.25 mg L -1 dan GA 3 0.3 mg L -1 . Perbedaan respon jumlah tunas dapat disebabkan karena perbedaan  genotipe  yang  berkaitan  dengan  kandungan endogen yang ada dalam sistem tanaman. Perbedaan respon tunas  dapat  disebabkan  karena  perbedaan  genotipe  dan eksplan yang digunakan. Konsentrasi BAP yang digunakan peneliti antara 0.25-2.00 mg L -1 dan konsentrasi GA 3 yaitu 0.1-1.0  mg  L -1 .  Faktor  tunggal  BAP  berpengaruh  nyata terhadap jumlah tunas diduga karena BAP telah berada pada konsentrasi optimal sehingga memacu pembelahan sel dan mempengaruhi  lintasan  diferensiasi  sel  tanaman  (Davies 2004). Penambahan GA 3 secara tunggal tidak memberikan pengaruh  nyata  pada  penambahan  jumlah  tunas  pepaya Callina. Hal ini didukung oleh pernyataan Wu et al. (2012) bahwa  GA 3 dapat  menginduksi  pemanjangan  tunas  tetapi mengurangi pembentukan jumlah tunas.
Pemberian  beberapa  konsentrasi  GA 3 yang  berbeda pada selang 0.3 mg L -1 yang dikombinasikan dengan BAP (0,  0.5,  1.0,  1.5,  dan  2  mg  L -1 )  mendorong  pertambahan jumlah daun pepaya dengan persamaan y = 20.33x 3 - 65.4x 2 + 49.71x + 3.69 dan R² = 0.980 (Gambar 3C). Pertambahan jumlah daun maksimum pada tunas pepaya kultivar Callina diperoleh pada GA 3 0.3 mg L -1 yang dikombinasikan dengan BAP 0.5 mg L -1 sebesar 14.7 daun per tunas. Penggunaan GA 3 secara  tunggal  akan  menghasilkan  tunas  dengan berdaun  kecil.  Ramesh et  al. (2018)  juga  menyebutkan juga  bahwa  GA 3 dengan  konsentrasi  yang  tinggi  (lebih dari 1 mg L -1 )  juga  dapat  menyebabkan  bentuk  daun
BAP : GA 3 (mg L -1 )
MST (minggu setelah tanam) 2 4 6 8 10 0.0 0.0 1 1.2bcde 1.3bcd 1.3def 1.3cdef 0.0 0.3 1 1.1cde 1.3bcd 1.5bcdef 1.5bcdef 0.0 0.4 1 1.1cde 1.3bcd 1.4bcdef 1.4bcdef 0.5 0.0 1 1.0de 1.3bcd 1.5bcdef 1.5bcdef 0.5 0.3 1 1.7a 2.0a 2.5a 2.6a 0.5 0.4 1 1.4abcd 1.6abc 1.7bcd 1.7bcd 1.0 0.0 1 1.1cde 1.2cd 1.2ef 1.2ef 1.0 0.3 1 1.3bcde 1.3bcd 1.5bcdef 1.5bcdef 1.0 0.4 1 1.3bcde 1.4bcd 1.5bcdef 1.5bcdef 1.5 0.0 1 1.6ab 1.7ab 1.9bc 1.9bc 1.5 0.3 1 1.0de 1.0d 1.0f 1.0f 1.5 0.4 1 1.5abc 1.6ab 2.0ab 2.0b 2.0 0.0 1 1.5abc 1.6ab 1.6bcde 1.6bcde 2.0 0.3 1 1.3bcde 1.3bcd 1.4cdef 1.4bcdef 2.0 0.4 1 1.2bcde 1.2cd 1.2ef 1.2def KK(%) 16 19 23 23
Tabel 1. Jumlah tunas pepaya kultivar Callina perlakuan BAP dan GA 3 pada minggu ke-2 sampai minggu ke-10
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada α = 5%
tunas abnormal sehingga tunas tidak dapat dipindahkan ke tahap pengakaran. Konsentrasi terbaik dalam menghasilkan pertumbuhan  tunas  optimum  diperoleh  pada  kombinasi
BAP 0.5 mg L -1 dan GA 3 0.3 mg L -1 untuk Caliso dan BAP 0.5 mg L -1 dan GA 3 0.3 mg L -1 untuk Callina.

## KESIMPULAN
Eksplan tunas aksilar dengan persentase kontaminasi terendah berasal dari pepaya yang ditanam di rumah kaca dengan  proses  sterilisasi  metode  M4  yaitu  penyemprotan benlate dan agrept masing-masing 1 g L -1 sehari sebelum pengambilan  eksplan,  kemudian  dilakukan  perendaman eksplan  pada  aquadest  steril  bersuhu  rendah  (4-8 o C)  dan dilanjutkan  dengan  perlakuan  sterilisasi  metode  dasar dengan  menghasilkan  tingkat  kontaminasi  yang  rendah yaitu 19.9 % untuk Caliso dan 29.9 % untuk Callina. Media terbaik  untuk  menghasilkan  tinggi  tunas  optimum  adalah GA 3 0.3 mg L -1 dan BAP 0.5 mg L -1 untuk pepaya kultivar
Caliso  serta  GA 3 0.4  mg  L -1 dan  BAP  0.5  mg  L -1 untuk Callina. Tinggi tunas optimum yang diperoleh Caliso dan Callina pada media tersebut adalah 1.6 dan 1.8 cm, sehingga tunas siap untuk dipindahkan ke tahap pengakaran.

## DAFTAR PUSTAKA
Al-Shara, B., R.M. Taha, K. Rashid. 2018. Biotechnological methods and limitations of micropropagation papaya ( Carica  papaya L.)  production  [Review].  J. Anim. Plant Sci. 28:1208-1226.
Benazir, J.F., R. Suganthi, P. Chandrika, B. Mathithumila. 2013.  In  vitro  regeneration  and  transformation studies on Pelargonium grave-olens (geranium) -an important medicinal and aromatic plant. J. Medicine Plant Res. 38:2815-2822.
Bindu, B. 2015. Micro propagation of papaya variety CO-5. IJRAF. 2:46-49.
Caple,  A.D.,  K.T.  Cheah.  2016.  Micropropagation  of hermaprodit Carica papaya L. ‘Rainbow’ seedlings via  axillary  bud  pathway.  Biotechnology  BIO-12. CTAHR. University of Hawaii. Hawaii, US.
Chan,  L.K.,  C.K.H.  Teo.  2002.  Micropropagation  of Eksotika, a Malaysian papaya cultivar, and the field performance  of  the  tissue  culture  derived  clones. Acta Hort. 575:99-105.
Davies,  P.J.  2004.  Plant  Hormones:  Biosynthesis,  Signal Transduction,  Actions!.  Kluwer  Academic  Pr. Dordrecth, Netherlands, NL.
y = 1.4x 3 - 4.5143x 2 + 3.3786x + 1.5529 R² = 0.7807 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ju ml ah T un as pe r e ksp la n Konsentrasi BAP (mg L -1 )
y = 20.333x 3 - 65.4x 2 + 49.717x + 3.69 R² = 0.9809 -5 0 5 10 15 20 0 0.5 1 1.5 2 Ju ml ah d au n (h el ai ) Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 1.5333x 3 - 4.7143x 2 + 3.6452x + 1.0529 R² = 0.7875 0 1 2 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi T un as (c m) Konsentrasi BAP (mg L -1 )
Gambar 3. Respon (A) jumlah tunas, (B) tinggi tunas dan (C) jumlah daun pada eksplan pepaya kultivar Callina pada perlakuan BAP 0, 0.5, 1, 1.5, dan 2 mg L -1 pada tingkat GA 3 0, 0.3, dan 0.4 mg L -1 pada umur 10 MST A B C GA 3 0
1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1
1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006
R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5 2 Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4)
1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3
0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m) Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10
20
30 0 0.5 1 1.5
2 Ju m lah d au n pe pay a
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) GA 3 0.4 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686
R² = 0.7917 0 1 2 3
0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m) Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227
0 10 20 30 0 0.5 1 1.5 2 Ju m lah d au n pe pay a
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) Poly. (GA 3 0.3) 1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686
R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m) Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006
R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5 2 Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) GA 3 0.3
1
y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917 0 1 2 3 0 0.5 1 1.5 2

## Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m)
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227 0 10 20 30 0 0.5 1 1.5 2 Ju m lah d au n pe pay a Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) Poly. (GA 3 0)
1 y = 0.9333x 3 - 2.5429x 2 + 1.5524x + 1.6686 R² = 0.7917
0 1 2 3
0 0.5 1 1.5 2 Ti ng gi tu na s p ep ay a (c m) Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) y = 14.667x 3 - 48.429x 2 + 32.69x + 18.006 R² = 0.9227
0 10 20 30
0 0.5 1 1.5
2 Ju m lah d au n pe pay a
Konsentrasi BAP (mg L -1 ) GA3 0 GA3 0.3 GA3 0.4 Poly. (GA3 0) Poly. (GA3 0.3) Poly. (GA3 0.4) Poly. (GA 3 0.4)
Hervani,  D.,  D.  Efendi,  M.R.  Suhartanto,  B.S.  Purwoko. 2018.  The  preservation  of  somatic  embryos  of papaya derived from papaya lateral shoots after being stored in cryopreservation to maintain plant genetic information in the future. Biodiversitas 19:774-779.
Ngezahayo,  F.,  B.  Liu.  2014.  Axillary  bud  proliferation approach  for  plant  biodiversity  conservation  and restoration. Biodiver. Conserv. 3:1-9.
Nguyen, V.H., Yen, C.H. Hsieh. 2018. Effect of nutritional and growth hormonal factors on in vitro regeneration of papaya ( Carica papaya L. cv. Red Lady). J. Nath. Sci. Foundation Sri Langka 46: 559-568.
Ramesh,  A.N.,  D.B.  Santhosh,  D.  Suresh,  K.  Radha,  K. Rashmi,  K.  Hajira.  2018.  In  vitro  regeneration  of papaya ( Carica papaya L.) variety Surya. Int. J. Pure App. Biosci. 6:456-461.
Roy,  P.K.,  S.K.  Roy,  M.L.  Hakim.  2012.  Propagation  of papaya ( Carica papaya L.) cv. Shahi through in vitro culture. Bangladesh J. Bot. 41:191-195.
Samanmalie, L.G.I., B.M.V.S. Basnayke, A. Rohini, K.G.G. Indika. 2017. Developing a tissue culture protocol for
production of planting materials of papaya ( Carica papaya L.)  hybrid.  Ann.  Sri  Lanka  Dept.  Agric. 19:45-52.
Setargie, A., F. Mekbib, E. Abraha. 2015. In vitro propagation of papaya ( Carica papaya L.). World J. Agric. Sci.
11:84-88.
Sobir.  2009.  Sukses  Bertanam  Pepaya  Unggul  Kualitas Supermarket. Agromedia Pustaka, Jakarta, ID.
Thomas,  P.,  S.  Kumari.  2010.  Inconspicuous  endophytic bacteria  mimicking  latex  exudates  in  shoot  tip cultures of papaya. Sci. Hort. 124:469-474.
Wardani,  F.F.,  D.  Efendi,  D.  Dinarti,  J.K.  Winoto.  2019. Perbanyakan  pepaya  ( Carica  papaya L.)  ‘Sukma’ in  vitro  dari  eksplan  tunas  pucuk  sebagai  respon terhadap BA dan NAA. J. Agron. Indonesia 47:203- 209.
Wu,  K.,  S.  Zeng,  Z.  Chen,  J.  Duan.  2012.  In  vitro  mass propagation  of  hermaproditic Carica  papaya cv Meizhonghong. Pak. J. Bot. 44:1669-1676.