Penurunan metabolisme ikan nila selama transportasi , Suwandi, R. et al.

## PENURUNAN METABOLISME IKAN NILA

## ( Oreochromis niloticus ) PADA PROSES TRANSPORTASI MENGGUNAKAN EKSTRAK
DAUN JAMBU BIJI ( Psidium guajava var. pyrifera)
Application of White Pulp Guava Leaf Extract ( Psidium guajava var. pyrifera) in Transportation of Tilapia ( Oreochromis niloticus )
Ruddy Suwandi*, Roni Nugraha, Wina Novila
Departemen Teknologi Hasil Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor
Diterima 7 Oktober 2012/Disetujui 9 Desember 2012

## Abstract
The  purposes  of  this  research  were  to  study  the  effectiveness  and  to  determine  the  concentration  of Psidium  guajava var.  pyrifera  leaf  extract  on  inhibiting  the  excretion  level  of  tilapia  ( Oreochromis niloticus )  during  wet  system  transportation.  The  extract  with  various  concentrations  (0%,  0.5%,  0.75%, and 1% (v/v)) was added to the medium of fish. Changes in water quality were observed for 2 hours. The LC 50 of  the  extract  was  4.15%.  The  extract  reduced  the  metabolic  level  of  fish,  which  indicated  by decreasing the level of CO 2 (22%) and TAN (78.6%) for 2 hours  of transportation period. The value of CO 2 and TAN excretion of fish which treated with white pulp guava leaf extract was lower than that of untreated  fish,  but  higher  turbidity  value  was  caused  by  the  dissolved  particles  from  the  extract.  The results showed that the white pulp guava leaf extract can inhibit the excretion level of tilapia.
Keywords: excretion, Oreochromis niloticus , Psidium guajava var. pyrifera, wet system transportation

## Abstrak
Tujuan penelitian ini adalah mempelajari efektivitas dan menentukan konsentrasi ekstrak daun jambu biji  ( Psidium  guajava var.  pyrifera)  dalam  menghambat  laju  ekskresi  ikan  nila  ( Oreochromis  niloticus ) selama transportasi sistem basah. Ekstrak daun jambu biji dengan berbagai konsentrasi (0%; 0,5%; 0,75% dan  1%)  ditambahkan  pada  media  ikan  hidup.  Perubahan  kualitas  air  diamati  selama  2  jam.  Nilai  LC 50 ekstrak daun jambu biji daging buah putih adalah 4,15%. Ekstrak daun jambu biji dapat menurunkan laju metabolisme  ikan,  yang  diindikasikan  dengan  penurunan  kadar  CO 2 (22%) dan  TAN  (78,6%)  selama  2 jam waktu transportasi. Nilai ekskresi CO 2 dan TAN pada ikan yang diberi perlakuan ekstrak daun jambu biji  lebih  rendah  dibandingkan  ikan  yang  tidak  diberi  perlakuan,  namun  nilai  turbiditas  lebih  tinggi diakibatkan  adanya  partikel  terlarut  dari  ekstrak.  Hasil  penelitian  menunjukkan  ekstrak  daun  jambu  biji mampu menghambat laju ekskresi ikan nila.
Kata kunci: ekskresi, Oreochromis niloticus , Psidium guajava var. pyrifera, transportasi sistem basah

## PENDAHULUAN
Ikan nila ( Oreochromis niloticus ) merupakan  spesies  ikan  budidaya  air  tawar yang  dikenal  luas  di  masyarakat,  dan  telah menjadi  andalan  komoditas  perikanan  untuk mendukung  ketahanan  pangan  nasional  dan peningkatan ekspor komoditas perikanan.
*Korespondensi: Jln. Lingkar Akademik, Kampus IPB Dramaga. Telp. +622518622915 Fax. +622518622916. E-mail: rdsuwandi@yahoo.com
Ikan nila yang dipasarkan dalam keadaan hidup memiliki harga yang lebih tinggi. Kendala yang sering dihadapi pada proses transportasi sistem basah,  adalah  jumlah  kapasitas  angkut  yang sedikit  serta  belum  dilakukannya  peningkatan daya  tahan  ikan  selama  proses  transportasi. Peningkatan  kapasitas  angkut  telah  dilakukan dengan mengurangi jumlah air yang digunakan dan  atau  meningkatkan  jumlah  ikan  yang diangkut (Syamdidi et al . 2006).
Upaya  peningkatan  ketahanan  hidup  ikan dalam transportasi sistem basah dapat dilakukan  dengan  penurunan  laju  metabolisme ikan.  Salah  satu  aktivitas  fisiologis  yang  perlu dikaji  adalah  laju  ekskresi.  Laju  ekskresi berkaitan  dengan  banyaknya  sisa  metabolisme yang  dikeluarkan  oleh  ikan  melalui  feses  dan urin ke dalam air  yang bersifat toksik terhadap ikan.  Upaya  yang  dapat  dilakukan  untuk penghambatan  laju  ekskresi  pada  ikan  selama transportasi adalah dengan penambahan ekstrak daun jambu  biji.  Daun  jambu  biji  mengandung komponen  flavonoid,  yaitu  kuersetin  yang dapat  menghambat  pergerakan  dinding  usus (Sanda et  al .  2011).  Tujuan  penelitian  ini adalah  mempelajari  efektivitas  dan  konsentrasi terbaik  ekstrak  daun  jambu  biji  dalam menghambat  laju  ekskresi  ikan  nila  serta mengaplikasikannya
dalam kegiatan
transportasi.

## MATERIAL DAN METODE Bahan dan Alat
Bahan utama yang digunakan, yaitu ikan nila dan  daun  jambu  biji.  Daun  jambu  biji  yang diambil  pada  posisi  ke-3  atau  ke-4  dari  pucuk. Ikan  nila  yang  digunakan  dalam  pengujian merupakan  ikan  ukuran  konsumsi  (±200  g)  yang diperoleh  dari  daerah  Desa  Petir,  Kecamatan Dramaga,  Kabupaten  Bogor.  Daun  jambu  biji diperoleh  dari  daerah  Budi  Agung,  Kecamatan Tanah  Sareal,  Kabupaten  Bogor.  Bahan-bahan pembantu  yang  digunakan,  antara  lain  air, akuades,  chlorox,  indikator  fenolftalein,  larutan phenate, MnSO 4 , NH 3 , dan NaOH.
Alat-alat yang digunakan pada penelitian ini, antara lain timbangan (Tanita), simulator transportasi,  aerator,  multimeter  parameter kualitas  air  (TOA  DKK), pH-meter  (Thermo Orion  3  Star),  labu  Erlenmeyer,  tes  kit glukosa darah (glucosaDR), DO-meter (Oxygen  Meter),  turbidimeter  (Hach),  dan spektrofotometer.

## Metode Penelitian
Penelitian  dilakukan  melalui  dua  tahap, yaitu penelitian pendahuluan dan penelitian
utama.  Pembuatan  ekstrak  daun  jambu  biji mengacu  pada  penelitian  Birdi et  al .  (2010), yakni ekstrak daun jambu biji disiapkan dalam beberapa tahapan, antara lain sebanyak 562,5 g daun jambu  biji  diblender,  kemudian diekstrak dalam  pelarut  air  sebanyak  9  L.  Proses ekstraksi  dilakukan  dengan  perebusan  hingga pelarut  air  tereduksi  menjadi  2.250  mL, kemudian dilakukan penyaringan dengan kertas saring.  Hasil  penyaringan  tersebut  dijadikan larutan  stok  ekstrak  daun  jambu  biji  dengan konsentrasi
100% (v/v). Penelitian pendahuluan  dilakukan  dengan  pengenceran konsentrasi larutan stok hingga tingkat konsentrasi  yang  dikehendaki,  yaitu  0%,  5%, 10%, 15%, 20%, dan 25% (v/v).
Tahap  awal  pelaksanaan  pengujian  antara lain,  penyiapan  biota  uji,  yaitu  ikan  nila sebanyak  24  ekor.  Ikan  nila  ditimbang, kemudian  masing-masing  sebanyak  4  ekor ditempatkan pada wadah toples  yang berisikan media  air.  Ikan  nila  yang  telah  ditempatkan dalam  wadah  uji  diaklimatisasi,  kemudian ditambahkan  larutan  ekstrak  daun  jambu  biji dengan  konsentrasi  0%,  5%,  10%,  15%,  20%, dan  25%  (v/v)  pada  masing-masing  toples. Jumlah  ikan  yang  mati  diamati  setiap  1  jam selama 3 jam sejak larutan ekstrak ditambahkan ke dalam media uji. Tingkat letal ekstrak  diindikasikan  dari  jumlah  data  ikan yang  mati.  Penentuan  LC 50 dianalisis  dengan analisis probit menggunakan SPSS 16.0.
Kisaran  konsentrasi  ekstrak  daun  jambu biji  yang  diujikan  pada  ikan  nila  dapat ditentukan  berdasarkan  data  awal  konsentrasi letal  ekstrak.  Penelitian  utama  meliputi pengamatan  tingkah  laku  ikan,  pengujian glukosa  darah  ikan,  dan  kualitas  air  pada  saat simulasi  transportasi.  Ekstrak  daun  jambu  biji disiapkan  dalam  beberapa  tahapan,  antara  lain sebanyak  50  g  daun  jambu  biji  diblender, kemudian  ditambahkan  pelarut  air  sebanyak 800  mL.  Proses  ekstraksi  dilakukan  dengan perebusan  hingga  pelarut  air  tereduksi  menjadi 200  mL,  kemudian  dilakukan  penyaringan dengan  kertas  saring.  Hasil  penyaringan tersebut dijadikan larutan stok ekstrak daun
jambu  biji  dengan  konsentrasi  100%  (v/v). Konsentrasi  larutan  stok  diencerkan  hingga tingkat  konsentrasi  yang  dikehendaki,  yaitu 0%  (kontrol),  0,5%,  0,75%,  dan  1%  (v/v). Parameter kualitas air yang diuji adalah suhu, turbiditas,  DO,  CO 2 ,  pH,  dan  TAN. Pengamatan  respon  tingkah  laku  ikan  dan pengujian  kualitas  air  dilakukan  setiap  30 menit  selama  2  jam  simulasi.  Pengujian glukosa  darah  ikan  nila  dilakukan  sebelum dan setelah simulasi transportasi.
Ikan  nila  yang  diujikan  sebanyak  4  ekor untuk  masing-masing  ulangan.  Perbandingan ikan  dan  air  yang  digunakan  selama  simulasi transportasi  adalah  1:3.  Pengambilan  darah ikan  dilakukan  sebelum  simulasi  transportasi untuk  pengujian  glukosa  darah  ikan.  Ikan  nila dimasukkan ke dalam wadah toples yang telah berisi air, kemudian ditambahkan ekstrak daun jambu  biji  hingga  tercapai  konsentrasi  yang diinginkan.  Simulasi  dilakukan  selama  2  jam menggunakan simulator transportasi. Setiap 30 menit dilakukan pengamatan tingkah laku ikan dan pengambilan sampel air secara duplo untuk pengujian  kualitas  air.  Pengujian  terhadap glukosa  darah  ikan  untuk  melihat  tingkat  stres dari  ikan  dilakukan  kembali  setelah  2  jam simulasi.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Nilai LC 50 Ekstrak Daun Jambu Biji Penelitian pendahuluan
dilakukan menggunakan  konsentrasi  ekstrak  daun  jambu biji  5%,  10%,  15%,  20%,  25%  dan  kontrol untuk  melihat  LC 50 dari  ekstrak  terhadap  ikan nila. Data mortalitas biota uji dibutuhkan
Tabel 1 Data mortalitas ikan selama pengujian
dalam penentuan LC 50 dari ekstrak daun jambu biji. Data mortalitas ikan nila selama pengujian disajikan  pada  Tabel  1.  Kematian  ikan  tidak terdapat  pada  menit  ke-120  untuk  kontrol, sedangkan  pada  perlakuan  konsentrasi  ekstrak 5% dan 10% masing-masing terdapat kematian ikan  yaitu  3  ekor  dan  2  ekor.  Ekstrak  dengan konsentrasi 15%, 20%, dan 25% menyebabkan kematian total biota uji (4 ekor) pada menit ke- 120. Hal  ini  mengindikasikan  bahwa  ekstrak daun  jambu  biji  memiliki  efek  letal  terhadap biota  uji.  Hasil  pengamatan  menunjukkan konsentrasi  15%,  20%  dan  25%  lebih  letal dibandingkan dengan konsentrasi 5% dan 10%. Hal  ini  dilihat  dari  jumlah  biota  uji  yang mengalami  kematian.  Penentuan  LC 50 dari ekstrak  daun  jambu  biji  dapat  dihitung  dengan analisis  probit.  Analisis  probit  menggunakan SPSS 16.0 menunjukkan nilai LC 50 ekstrak daun  jambu  biji  adalah  4,15%.  Hasil  ini menunjukkan  bahwa  konsentrasi  ekstrak daun jambu  biji  sebesar  4,15%  dalam  waktu 2  jam  menyebabkan  kematian  50%  populasi biota uji, yaitu ikan nila.
Kematian  ikan  disebabkan  oleh  konsentrasi ekstrak  daun  jambu  biji  yang  digunakan  terlalu tinggi  yang  menyebabkan  turbiditas  meningkat, sehingga ikan  menjadi stres dan  sulit beradaptasi dengan  kondisi  lingkungannya.  Kondisi  stres yang  cukup  tinggi  dalam  jangka  waktu  tertentu dapat  mengakibatkan  kematian,  karena  ikan sudah  tidak  dapat  mempertahankan  keadaan homeostatisnya. Pengujian untuk simulasi transportasi  ikan  nila  menggunakan  ekstrak dengan  konsentrasi  di  bawah  nilai  LC 50 ekstrak daun jambu biji.
Konsentrasi ekstrak Jumlah kematian ikan nila menit ke- P. guajava var. pyrifera (%) 0 60 120 180 0 0 0 0 1 5 0 0 3 4 10 0 0 2 4 15 0 0 4 4 20 0 3 4 4 25 0 0 4 4

## Simulasi Transportasi

## Respon Tingkah Laku Ikan Nila
Respon  tingkah  laku  ikan  yang  diamati meliputi gerak tubuh, gerak tutup insang, dan gerak  sirip.  Respon  tingkah  laku  ikan  nila selama  simulasi  transportasi  disajikan  pada Tabel  2.  Respon  ikan  dengan  penambahan dan  tanpa  penambahan  ekstrak  daun  jambu biji  mengalami  perbedaan  yang  nyata  pada menit  ke-90.  Penambahan  ekstrak  dapat menurunkan laju metabolisme ikan,
ditunjukkan  dengan  gerakan  tubuh,  gerak tutup  insang,  gerak  sirip  ikan  yang  lambat sehingga  dapat  meminimalkan  tingkat  stres pada  ikan.  Rachmawati et  al .  (2010) menyatakan  bahwa  stres  merupakan  respon bertahan pada hewan terhadap penyebab stres ( stressor ).
Respon stres tersebut menunjukkan  terjadinya  adaptasi  terhadap perubahan  yang  tidak  terduga  dan  untuk mengembalikan pada kondisi homeostasis.

## Kualitas Air
Kualitas  air  yang  baik  meningkatkan ketahanan hidup ikan selama proses transportasi. Hasil pengukuran suhu selama
simulasi transportasi disajikan pada Gambar 1. Suhu  air  pada  saat  simulasi  transportasi berkisar  antara  25,4-27,38°C.  Suhu  pada perlakuan  dengan  konsentrasi  0,75%  lebih rendah  dibandingkan  dengan  suhu  perlakuan yang lain. Perlakuan konsentrasi 0,5% mengalami  peningkatan  suhu  yang  lebih  besar dibandingkan  perlakuan  yang  lain.  Perbedaan suhu ini  diduga akibat  getaran yang dihasilkan simulator transportasi. Posisi wadah yang lebih dekat  dengan  sumber  getaran  memiliki  suhu yang  lebih  tinggi  diakibatkan  tumbukan  antar molekul  air  yang  lebih  tinggi  dibandingkan dengan  posisi  wadah  yang  jauh  dari  sumber getaran. Peningkatan suhu pada menit ke- 30 untuk  perlakuan  konsentrasi  1%  diduga juga  karena  aktivitas  ikan  yang  agak  lincah (Tabel  4)  yang  menyebabkan  tumbukan  antar molekul  air  sehingga  menimbulkan  panas. Penurunan  suhu  untuk  menit  selanjutnya  pada konsentrasi 1% dikarenakan aktivitas ikan yang relatif  lambat  atau  tenang.  Perubahan  suhu yang terjadi relatif kecil. Perubahan posisi yang sangat  cepat  menyebabkan  gesekan  antar molekul  air  sehingga  menimbulkan  panas (Supriyanto et al . 2007). Hal ini yang
Tabel 2 Respon tingkah laku ikan nila ( O. niloticus ) Konsentrasi Pengamatan menit ke- (%) 0 30 60 90 120 Gerak tubuh, Gerak tubuh, Gerak tubuh, Gerak tubuh,  Gerak tubuh
0 tutup insang, tutup insang, tutup insang, tutup insang, lambat, tutup dan sirip
dan sirip dan sirip dan sirip insang dan normal normal normal cepat sirip normal Gerak tubuh, Gerak tubuh, Gerak tubuh, Gerak tubuh,  Gerak tubuh,
0,5 tutup insang, tutup insang, tutup insang, tutup insang tutup insang, dan sirip dan sirip dan sirip dan sirip dan sirip normal normal normal agak lambat. lambat Gerak tubuh, Gerak tubuh, Gerak tubuh, Gerak tubuh, Gerak tubuh agak lambat,
tutup insang, tutup insang, tutup insang, tutup insang, 0,75 gerak tutup dan sirip dan sirip dan sirip dan sirip insang dan normal normal normal agak lambat sirip lambat Gerak tubuh, Gerak tubuh Gerak tubuh, Gerak tubuh,  Gerak tubuh, agak lincah,
tutup insang, tutup insang, tutup insang, tutup insang, 1 tutup insang dan sirip dan sirip dan sirip dan sirip dan sirip agak normal lambat lambat lambat cepat
Penurunan metabolisme ikan nila selama transportasi , Suwandi, R. et al.
menyebabkan terjadinya peningkatan suhu air. Parameter kualitas air selanjutnya yang diamati adalah turbiditas. Hasil pengukuran turbiditas disajikan pada Gambar 2. Kisaran kekeruhan menit ke-0 hingga menit ke-120 untuk  semua perlakuan  termasuk  kontrol berkisar antara 0- 14,4 NTU (Gambar 2). Rata-rata kekeruhan air mengalami peningkatan selama simulasi transportasi untuk semua perlakuan. Kondisi awal air yang ditambahkan dengan ekstrak sudah terukur kekeruhannya sebelum dimasukkan ikan, sedangkan kontrol kekeruhannya bernilai 0 NTU. Peningkatan kekeruhan  yang  terjadi  pada  perlakuan merupakan akumulasi warna dari ekstrak daun jambu biji dan buangan ikan. Nilai kekeruhan perlakuan dengan penambahan ekstrak lebih
tinggi dibandingkan kontrol akibat adanya partikel  terlarut  dari  ekstrak.  Perubahan
turbiditas  akibat  proses  metabolisme  ikan pada akhir simulasi transportasi memiliki kekeruhan yang relatif sama. Batas tertinggi kekeruhan  menurut  Wedemeyer  (1996) adalah  20  NTU.  Kisaran  turbiditas  yang terukur selama pengujian masih di bawah batas tertinggi kekeruhan.
Hasil  pengukuran  DO  disajikan  pada Gambar  3.  Kisaran  DO  yang  terukur  selama simulasi transportasi dua jam yaitu 2,55-6,85 mg/L.  Perbedaan  data  kadar  DO  pada  setiap perlakuan kemungkinan terjadi karena perbedaan ukuran ikan. Ikan kecil
mengkonsumsi  oksigen  lebih  tinggi  per  satuan waktu  dan  bobot  daripada  ikan  berukuran besar.  Hal  ini  disebabkan  ikan berukuran  kecil lebih  banyak  memerlukan  energi  untuk pertumbuhan  (Boyd  1990).  Ukuran  ikan  untuk perlakuan  konsentrasi  0,75%  lebih  kecil dibandingkan  dengan  perlakuan  yang  lain. Tingkat  konsumsi  oksigen  pada  menit  ke-30 untuk perlakuan 0,75% diduga lebih tinggi. Hal ini  yang  menyebabkan  terjadinya  penururan DO  pada  menit  ke-30  untuk  perlakuan konsentrasi 0,75%. Ukuran ikan untuk perlakuan  0,5%  lebih  besar  dibandingkan dengan  perlakuan  yang  lain,  oleh  sebab  itu tingkat  konsumsi  oksigen  pada  menit  ke-30 lebih  rendah.  Peningkatan  DO  pada  menit  ke- 30  untuk  perlakuan  dengan  konsentrasi  0,5% diduga karena tingkat konsumsi oksigen rendah dan adanya penambahan aerasi.
Sagita et  al .  (2008)  menyatakan  bahwa kandungan  oksigen  terlarut  dalam  air  akan menurun  sejalan  dengan  lamanya  transportasi dan adanya konsumsi oksigen oleh ikan. Kadar oksigen terlarut yang berkurang dalam air juga disebabkan  oleh  adanya  buangan-buangan organik  yang  banyak  membutuhkan  oksigen sewaktu  penguraian  berlangsung  (Sofarini 2009). Peningkatan suhu juga dapat mengurangi tingkat kelarutan oksigen dalam air (Ezzat et  al .  2012).  Teknologi  yang  umum digunakan  dalam  sistem  transportasi  basah yaitu pemasangan aerator sebagai suplai
Gambar 1 Hasil pengukuran suhu ([●] kontrol; Gambar  2  Hasil  pengukuran  turbiditas ([●] [■] 0,5%; [Δ] 0,75%; [×]1%); huruf kontrol; [■] 0,5%; [Δ] 0,75%; [×]1%); berbeda pada parameter waktu yang huruf berbeda pada parameter waktu sama menunjukkan hasil yang berbeda yang sama menunjukkan hasil yang nyata. berbeda nyata.
Gambar 3 Hasil pengukuran DO ([●] kontrol; [■] 0,5%;  [Δ]  0,75%;  [×]1%);  huruf berbeda  pada  parameter  waktu  yang sama menunjukkan hasil yang berbeda nyata.
Gambar  4  Hasil  pengukuran  CO 2 ([●]  kontrol; [■]  0,5%;  [Δ]  0,75%;  [×]1%);  huruf berbeda  pada  parameter  waktu  yang sama menunjukkan hasil yang
berbeda nyata.
oksigen  (Suwandi et  al .  2011).  Kisaran  DO yang  terukur  selama  simulasi  transportasi masih  dalam  rentang  DO  yang  aman  untuk ikan.  Sofarini  (2009)  menyatakan  bahwa konsentrasi oksigen terlarut minimum sebesar 2 mg/L  cukup  memadai  untuk  menunjang  secara normal komunitas akuatik perairan.
Hasil  pengukuran  CO 2 selama  simulasi disajikan  pada  Gambar  4.  Kisaran  CO 2 yang diukur  selama  simulasi  tranportasi  antara  2,1- 6,9 mg/L. Karbondioksida yang dihasilkan oleh proses  respirasi  ikan  untuk  perlakuan  lebih rendah  dibandingkan  dengan  kontrol.  Hal  ini diduga  disebabkan  oleh  efek  ekstrak  daun jambu  biji.  Penambahan  ekstrak  daun  jambu biji  mengakibatkan  penurunan  metabolisme ikan  termasuk  penurunan  laju  respirasi, sehingga  CO 2 yang  dihasilkan  juga  sedikit.
Peningkatan  kadar  CO 2 dalam  air  disebabkan oleh  aktivitas  pernapasan  ikan.  Irianto  (2005) menyatakan  bahwa  semakin  tinggi  CO 2 yang dihasilkan  dari  suatu  respirasi  akan  cenderung membebaskan  H + sehingga  pH  air  akan menurun.  Hasil  pengukuran  menunjukkan bahwa  perubahan  kadar  CO 2 pada  perlakuan relatif  kecil,  sehingga  belum  diikuti  dengan penurunan pH air.
Hasil  pengukuran  pH  menunjukkan bahwa  pH  selama  simulasi  transportasi berkisar  antara  5,69-6,65  (Gambar  5). Perubahan  nilai  pH  dipengaruhi  oleh  laju respirasi ikan, waktu transportasi, dan
keasaman media air. Peningkatan nilai pH pada perlakuan dipengaruhi keberadaan ion hidroksil.  Perubahan  nilai  pH  yang  cenderung meningkat  selama  pengujian  disebabkan  oleh keberadaan  ion  hidroksil  yang  lebih  besar dibandingkan  ion  hidrogen  (Irianto  2005). Peningkatan  CO 2 selama  simulasi  transportasi belum diikuti dengan penurunan pH air. Hal ini diduga  karena  kadar  CO 2 yang  kecil.  Sanda et al .  (2009)  menyatakan  bahwa  daun  jambu biji mengandung komponen flavonoid yaitu kuersetin.  Kuersetin  mengandung  5  gugus hidroksil  bebas  dan  merupakan  senyawa  polar (Sukarianingsih  2006).  Keberadaan  gugus hidroksil  dari  kuersetin  dalam  air  diduga  juga berkaitan  dengan  peningkatan  pH  selama simulasi  transportasi.  Kisaran  pH  air  tawar yang cukup baik untuk ikan dapat hidup dengan baik  adalah  6-9  (Sofarini  2009).  Derajat keasaman  air  selama  simulasi  transportasi masih  dalam  batas  aman  yang  memungkinkan ikan nila untuk bertahan hidup.
Hasil  pengujian  TAN  masing-masing perlakuan  disajikan  pada  Gambar  6.  Kisaran nilai  dari  hasil  pengujian  masing-masing perlakuan  pada  menit  ke-30  hingga  menit  ke- 120  antara  0,13-1,92  mg/L.  Nilai  TAN  untuk kontrol,  perlakuan  konsentrasi  0,5%,  0,75%, dan 1% mengalami perubahan nilai TAN yang relatif stabil dari menit ke-30 hingga menit ke- 120. Hasil  analisis  ragam  menunjukkan  bahwa perlakuan penambahan ekstrak daun jambu
Gambar 4 Hasil pengukuran pH ([●] kontrol; [■]
0,5%;  [Δ]  0,75%;  [×]1%);  huruf berbeda  pada  parameter  waktu  yang sama menunjukkan hasil yang berbeda nyata. Gambar 4 Hasil pengukuran pH ([●] kontrol; [■] 0,5%;  [Δ]  0,75%;  [×]1%);  huruf berbeda  pada  parameter  waktu  yang sama menunjukkan hasil yang berbeda nyata. biji  yang  diberikan  memberikan  pengaruh terhadap TAN yang dihasilkan. Kenaikan nilai TAN mengindikasikan bahwa terjadi akumulasi  buangan  yang  dihasilkan  ikan. Aktivitas  metabolisme  yang  tinggi  akibat peningkatan  suhu  dapat  menyebabkan  laju ekskresi  amonia  meningkat  (Supriyono et  al . 2007).  Total  amonia  nitrogen  pada  budidaya ikan  bersifat  toksik  pada  konsentrasi  1,5  mg/L (Crab et  al. 2007).  Nilai  TAN  untuk  kontrol lebih besar dari 1,5 mg/L, sedangkan nilai TAN untuk perlakuan lebih kecil dari 1,5 mg/L. Hal ini  mengindikasikan  bahwa  TAN  pada  kontrol dapat membahayakan kehidupan ikan.
Pemberian  ekstrak  daun  jambu  biji memberikan  efek  penghambatan  terhadap laju  ekskresi  ikan.  Hal  ini  dapat  dilihat  dari nilai TAN kontrol yang berbeda dengan nilai TAN perlakuan yang diberikan. Milot (2003) menjelaskan bahwa ekstrak daun jambu biji
dapat  memperlambat  pergerakan  usus  dan meningkatkan  penyerapan  air  di  usus  besar. Sanda et  al .  (2009)  menyatakan  daun  jambu biji  mengandung  komponen  flavonoid  yaitu kuersetin  yang  dapat  menghambat  pergerakan dinding  usus  dan  mengurangi  permeabilitas kapiler  dalam  rongga  perut.  Penghambatan pergerakan dinding usus menyebabkan penurunan  laju  ekskresi,  berupa  buangan  ikan. Ekstrak daun jambu biji juga memiliki aktivitas antistres.  Aktivitas  antistres  dapat  menekan metabolisme,  termasuk  laju  ekskresi  amonia dari  insang.  Penurunan  laju  ekskresi  amonia dari  insang  diindikasikan  dengan  gerak  tutup insang  yang  relatif  lambat  sehingga  amonia yang diekskresikan jumlahnya sedikit.
Perlakuan yang diberikan secara keseluruhan  memberikan  pengaruh  pada parameter kualitas air, yaitu suhu, turbiditas, DO, CO 2 , pH, dan TAN. Ekstrak daun jambu
Tabel 3 Hasil pengujian glukosa darah ikan
Konsentrasi Nilai glukosa darah (mg/dL) Ulangan 1 Ulangan 2 (%) Awal Akhir Perubahan Awal Akhir Perubahan 0 130 151 + 20 106 142 + 36 0,5 118 145 + 27 181 202 + 21 0,75 66 192 + 126 78 176 + 98 1 133 108 - 25 118 73 - 45
Keterangan: + : besar peningkatan glukosa darah - : besar penurunan glukosa darah
biji  mampu  menghambat  laju  ekskresi  ikan, sehingga  meminimalkan  akumulasi  amonia  di dalam air selama simulasi transportasi. Perlakuan konsentrasi  ekstrak  0,5%  memiliki  nilai  TAN yang  lebih  rendah,  yaitu  0,79  mg/L,  bila dibandingkan  dengan  nilai  TAN  kontrol,  yaitu 1,92  mg/L,  sedangkan  perlakuan  konsentrasi
0,75%  dan  1%,  memiliki  nilai  TAN,  yaitu masing-masing  0,5  mg/L  dan  0,41  mg/L. Konsentrasi  ekstrak  daun  jambu  biji  sebesar  1% merupakan  konsentrasi  yang  optimal  untuk transportasi ikan nila selama 2 jam.

## Kadar Glukosa Darah Ikan Nila
Kadar  glukosa  darah  ikan  yang  terukur dapat dijadikan sebagai indikator stres dari ikan nila.  Hasil  pengujian  glukosa  darah  disajikan pada  Tabel  3.  Hasil  pengujian  glukosa  darah menunjukkan  bahwa  nilai  glukosa  darah  untuk kontrol, konsentrasi 0,5% dan 0,75% mengalami  peningkatan  dari  pengujian  awal hingga pengujian akhir. Kemungkinan terjadinya  perbedaan  data  glukosa  darah  ikan karena  perbedaan  ukuran  ikan.  Peningkatan glukosa darah dapat juga diakibatkan oleh stres yang dialami ikan selama simulasi transportasi. Kondisi  stres  menyebabkan  sel  kromafin melepaskan  hormon  katekolamin,  adrenalin, dan  non  adrenalin  ke  dalam  sirkulasi  darah. Hormon  stres  tersebut  berhubungan  dengan mobilisasi kortisol dan produksi glukosa dalam ikan melewati jalur glukogenesis dan glikogenolisis  untuk  mengatasi  kebutuhan energi  yang  diakibatkan  oleh  stresor  (Porchaz et  al. 2009).  Peningkatan  kadar  glukosa darah merupakan efek sekunder dari stres yang dipicu oleh pelepasan kortikosteroid dan katekolamin. Stres menyebabkan terjadi peningkatan glukokortikoid yang berakibat pada
peningkatan  kadar  glukosa  darah  untuk mengatasi  kebutuhan  energi  yang  tinggi  pada saat  stres  (Rachmawati et  al .  2010).  Perlakuan dengan  penambahan  ekstrak  konsentrasi  1% menyebabkan  penurunan  nilai  glukosa  darah ikan  pada  akhir  simulasi.  Penurunan  nilai glukosa  darah  pada  perlakuan  konsentrasi  1% diduga juga disebabkan ketersediaan energi
dalam  tubuh  ikan  sudah  habis  sehingga  ikan berusaha  menggunakan  cadangan  glikogen untuk menyediakan energi. Hal ini didukung oleh  penelitian  Rachmawati et  al .  (2010), bahwa  penurunan  glukosa  darah  terjadi karena  ikan  berusaha  memobilisasi  glukosa dari  cadangan  glikogen.  Kemungkinan  lain penyebab  penurunan  glukosa  darah  ikan untuk  perlakuan  dengan  konsentrasi  1% karena  aktivitas  ekstrak  daun  jambu  biji. Sanda et  al .  (2011)  menyatakan  bahwa keberadaan tanin,  flavonoid,  kuersetin,  dan komponen  kimia  lain  berhubungan  dengan aktivitas  antihiperglikemik  ekstrak  daun jambu  biji.  Aktivitas  antihiperglikemik  dari daun  jambu  biji  ini  menyebabkan  terjadinya penurunan glukosa darah ikan untuk perlakuan dengan konsentrasi 1%.

## KESIMPULAN
Ekstrak daun jambu biji dengan konsentrasi  0,5%,  0,75%,  dan  1%  memiliki kemampuan  dalam  menghambat  laju  ekskresi pada ikan nila selama 2 jam waktu transportasi. Konsentrasi  ekstrak  daun  jambu  biji  sebesar 1% merupakan konsentrasi yang optimal untuk transportasi  ikan  nila  selama  2  jam.  Ekstrak daun  jambu  biji  dapat  diaplikasikan  dalam kegiatan transportasi ikan hidup.

## DAFTAR PUSTAKA
Birdi T, Daswani P, Brijesh S, Tetali P, Natu
A,  Antia  N.  2010.  Newer  insights  into the  mechanism  of  action  of Psidium guajava L. leaves in infectious diarrhoea. BMC Complementary  and
Alternative Medicine 10:33
Boyd  CE.  1990. Water  Quality in  Ponds for Aquaculture . Alabama. Birmingham Publishing Co.
Crab R, Avnimelech Y, Defoirdt T, Bossier P,
Verstraete  W.  2007.  Nitrogen  removal techniques in aquaculture for a sustainable production. Aquaculture 270: 1-14. Ezzat SM, ElKorashey RM, Sherif MM. 2012.
The  economical  value  of  nile  tilapia  fish Oreochromis niloticus in relation to water
Penurunan metabolisme ikan nila selama transportasi , Suwandi, R. et al.
quality of Lake Nasser, Egypt. Journal of American Science 8 (9) : 234-247.
Irianto  A.  2005. Patologi  Ikan Teleostei.
Yogyakarta : Gajah Mada University Press.
Milot B. 2003. Guava leaf extract pharmacological research. Journal of the
Australian  Traditional  Medicine  Society 9: 25-29.
Porchaz MM, Cordova LRM, Enriquez RR. 2009.
Cortisol  and  glucose:  reliable  indicators  of fish  stress? Pan-American Journal  of Aquatic Sciences 4 (2): 158-178.
Rachmawati  FN,  Susilo  U,  Sistina  Y.  2010. Respon  fisiologi  ikan  nila Oreochromis niloticus ,  yang  distimulasi  dengan  daur pemuasaan dan pemberian pakan kembali.  Prosiding  Seminar  Nasional Biologi Universitas Gajah Mada. Sagita  TF,  Sulmartiwi  L,  Rahardja  BS.  2008.
Penggunaan zeolit dengan dosis dan waktu pengamatan  berbeda  terhadap  sintasan benih ikan mas ( Cyprinus carpio
L) dan  perubahan  parameter  kimia  air media  dalam  transportasi  sistem  tertutup. Berkala Ilmiah Perikanan 2 (3) : 15-22.
Sanda KA, Grema HA, Geidam YA, Bukar-Kolo YM.  2011.  Pharmacological  aspects  of Psidium  guajava :  an  update. International Journal of Pharmacology 7 (3): 316-324.
Sofarini  D.  2009.  Analisa  kualitas  air  (fisik,
kimia)  sebagai  indikator  kehidupan induk ikan nila ( Oreochromis niloticus )
di Loka Budidaya Air Tawar Mandiangin. Jurnal Bumi Lestari 1 (9) : 77-81.
Sukarianingsih D.  2006.  Sintesis  dan penentuan  struktur  kuersetin  benzoat.
MIPA 35 (1): 55-69.
Supriyanto,  Haryadi,  Rahardjo  B,  Marseno DW.  2007.  Perubahan  suhu,  kadar  air, warna,  kadar  polifenol,  dan  aktivitas antioksidatif kakao selama penyangraian dengan energi gelombang mikro.
Agritech 27 (1): 18-26.
Supriyono  E,  Supendi  A,  Nirmala  K.  2007.
Pemanfaatan  zeolit  dan  karbon  aktif pada  sistem  pengepakan  ikan  corydoras ( Corydoras  aenu s). Jurnal  Akuakultur Indonesia 6 (2): 135-145.
Suwandi R, Jacoeb AM, Muhammad V. 2011.
Pengaruh cahaya terhadap aktivitas metabolisme  ikan  lele  dumbo  ( Clarias gariepinus )  pada  simulasi  transportasi sistem  tertutup. Jurnal  Pengolahan  Hasil Perikanan Indonesia 14 (2): 92-97.
Syamdidi,  Ikasari  D,  Wibowo  S.  2006.  Studi sifat  fisiologi  ikan  gurami  ( Osphronemus gouramy )  pada  suhu  rendah  untuk pengembangan teknologi transportasi ikan hidup. Jurnal Pascapanen dan Bioteknologi Kelautan dan Perikanan 1
(1):75-83.
Wedemeyer  GA.  1996. Physiology  of  Fish in Intensive Culture System. New York: Chapman and Hall.
Masyarakat Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia