PENGARUH KEJUTAN SUHU PANAS DAN LAMA WAKTU SETELAH PEMBUAHAN TERHADAP DAYA TETAS DAN ABNORMALITAS LARVA IKAN NILA ( Oreochromis niloticus )

## THE THERMAL TEMPERATURE SHOCK AND TIME AFTER FERTILIZATION
IN HATCHING RATE AND ABNORMALITY OF NILE FISH (Oreochromis niloticus)
Akhmad Taufiq Mukti,
Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Kampus C Mulyorejo - Surabaya, 60115 Telp. 031-5911451
Herliana Arsianingtyas dan Sri Subekti

## Abstract
The  chromosome  manipulation  in  fish  is  one  of  the  strategy  that  will  be  used  to  produce  of  the  high generation and good quality in its genetics, as follow fast to grow, disease resistant, high survival, tolerate with environment exchange and easy to be cultured. One of manipulation chromosome the method in fish used thermal temperature shock. The aim of the study was to know the thermal temperature shock and the time after fertilization forward hatching rate and abnormality of nile fish larvae and also to know the thermal temperature shock and the time after fertilization that resulted the best hatching rate and abnormality in nile fish larvae. The method was Factorial Completed Randomized Design as experimental design. The treatment used temperatures shock were 40ºC, 41ºC and 42ºC as long as 2,5 minutes, with the time of 80, 85 and 90 minutes after fertilization, each treatment was four replications.  The  primary  parameter  was  hatching  rate  and  abnormality  of  nile  fish  larvae  and  the  secondary parameter  were  fertilization  and  water  quality.  The  result  showed  that  the  thermal  temperature  shock  was significantly influenced to hatch rate and abnormality, but the time of shocking after fertilization and the interaction between them showed were not significantly influenced to hatch rate and abnormality. The highest of hatching rate and abnormality percentage was showed by the treatment with shocking 40°C was 90,77 percent and 2,60 percent.
Key words : nile fish, hatching rate, abnormality, heat temperature shock, time  after fertilization

## Pendahuluan
B u d i d a y a   i k a n   n i l a   ( O re o c h ro m i s niloticus )  mempunyai  prospek  yang  baik  untuk dikembangkan  di  Indonesia,  karena  budidayanya dapat dilakukan di tambak,  lahan bekas galian pasir atau penambangan dan karamba jaring apung (KJA) di perairan umum atau laut. Potensi ikan nila untuk di  budidayakan  cukup  besar  karena  memiliki beberapa kelebihan, yaitu mudah berkembangbiak, pertumbuhan  cepat,  kandungan  protein  cukup tinggi,  ukuran  tubuh  relatif  besar,  tahan  terhadap penyakit,  mudah  beradaptasi  dengan  lingkungan, harga relatif murah dan mempunyai nilai gizi yang cukup  tinggi  sebagai  sumber  protein  hewani.  Ikan nila  merupakan  jenis  ikan  omnivora,  artinya  tidak memerlukan  pakan  yang  khusus  (Wardoyo,  2005). Akan  tetapi,  akhir-akhir  ini  terjadi  penurunan produksi  budidaya  ikan  nila  yang  diakibatkan rendahnya kualitas induk dan benih yang dihasilkan oleh pembudidaya. Salah satu penyebabnya adalah pengelolaan  induk  yang  tidak  tepat  dan  tingginya inbreeding dalam  usaha  pembenihan  ikan  nila (Mukti dkk., 2001).
M a n i p u l a s i   k r o m o s o m   p a d a   i k a n merupakan  salah  satu  strategi  yang  diharapkan dapat  digunakan  untuk  memproduksi  keturunan dengan  sifat  unggul  dan  kualitas  genetiknya  baik,
seperti  memiliki  pertumbuhan  relatif  cepat,  tahan terhadap  penyakit,  kelangsungan  hidup  tinggi, toleran  terhadap  perubahan  lingkungan  (suhu,  pH, o k s i g e n   t e r l a r u t ,   s a l i n i t a s )   d a n   m u d a h dibudidayakan  (Mukti,  1999).  Tetraploidisasi m e r u p a k a n   s a l a h   s a t u   m e t o d e   m a n i p u l a s i kromosom  pada  ikan  yang  menghasilkan  ikan dengan  jumlah  kromosom  4n  (tetraploid).  Metode tetraploid  dapat  dilakukan  seperti  halnya  metode ginogenesis  ( gynogenesis  mitosis ),  yaitu  perlakuan kejutan  pada  telur  dilakukan  setelah  terjadi peloncatan polar body II (Mukti dkk., 2007).
Berdasarkan  penelitian  sebelumnya,  ikan nila  tetraploid  dapat  diproduksi  dengan  berbagai teknik,  yaitu  kejutan  suhu  panas,  kejutan  suhu dingin,  penggunaan  tekanan  tinggi  atau  radiasi ultraviolet.  Di  antara  berbagai  metode  tersebut, teknik  yang  paling  murah  dan  mudah  dilakukan untuk  menghasilkan  ikan  tetraploid  adalah  teknik kejutan  suhu  panas  (Herbst,  2002;  Shelton  2006). Chourrout  (1986) dalam Risnandar  (2001) menyatakan,  kejutan  suhu  panas  mempunyai kepraktisan,  yaitu  dapat  dilakukan  dalam  jumlah besar  dan  memerlukan  waktu  yang  lebih  singkat daripada kejutan suhu dingin.
Shelton  (2006)  dan  Suzu et  al .  (2006) menyebutkan,  waktu  optimal  dilakukan  kejutan
pada  zigot  adalah  ketika  sel  mencapai  tahap prometafase  akhir  atau  saat  metafase.  Namun kesulitannya  adalah  belum  ditemukan  prosedur yang tepat untuk menghasilkan ikan nila tetraploid, terutama  dalam  variabel  umur  telur  setelah pembuahan, lama kejutan dan tingkat suhu kejutan. Hal ini dibuktikan dari banyaknya hasil penelitian yang  prosedurnya  berbeda  dan  menghasilkan simpulan  yang  berbeda  pula.  Herbst  (2002) menyebutkan  bahwa  melakukan  kejutan  suhu panas  pada  waktu  24  menit  dengan  suhu  42,8oC akan menghasilkan ikan tetraploid sebesar sepuluh persen.  Namun,  hingga  saat  ini  belum  diperoleh induk nila yang benar-benar tetraploid.
P e n e l i t i a n   i n i   b e r t u j u a n   u n t u k Mengetahui pengaruh kejutan suhu panas dan lama waktu  setelah pembuahan terhadap daya  tetas dan abnormalitas  larva  ikan  nila  serta  mengetahui kejutan  suhu  panas  dan  lama  waktu  setelah pembuahan  yang  menghasilkan  persentase  daya tetas  dan  abnormalitas  tertinggi  pada  larva  ikan nila.
P e n e l i t i a n   i n i   d i h a r a p k a n   d a p a t
memberikan  informasi  mengenai  kejutan  suhu panas  dan  lama  waktu  setelah  pembuahan  untuk menghasilkan daya tetas dan abnormalitas tertinggi larva  ikan  nila.  Selain  itu  penelitian  tersebut bertujuan untuk menghasilkan ikan nila tetraploid.

## Materi dan Metode Penelitian
Tempat dan waktu Penelitian  ini  dilaksanakan  di  Balai Pengembangan  Budidaya  Air  Tawar  (BPBAT) Umbulan,  Pasuruan  pada  bulan  September  – Oktober 2008.
Alat penelitian Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah  kolam  pemeliharaan,  kolam  pemijahan, perangkat  penetasan  telur,  pompa  elektrik,  gelas berkaki  volume  300  ml,  waring  hijau,  sedotan, karet  gelang,  cawan  petri,  bulu  ayam,  mangkok bertutup, pengatur aerasi, saringan santan, botol air mineral  1,5  liter,  jaring  segitiga,  termometer, heater , kotak styrofoam dan alat tulis.
Bahan penelitian Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian ini adalah induk ikan nila yang terdiri dari 20 betina dan  10  jantan  berasal  dari  minimal  tiga  strain, pakan  induk  berupa  pellet  (kadar  protein  35 persen),  pakan  benih  berupa  cacing Tubifex spp, pakan benih berupa ukuran remah (kadar protein 35
–  40  persen), Artemia ,  obat  anti  jamur  ( Methylen Blue ),  larutan  fisiologis  pengencer  sperma  (NaCl 0,9  ml)  dan  garam  krosok  (garam  yang  belum diolah).

## Rancangan penelitian
Rancangan  percobaan  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  adalah  Rancangan  Acak Lengkap  Faktorial,  karena  terdapat  dua  sumber keragaman  (Kusriningrum,1990).  Dua  keragaman tersebut, yaitu kejutan suhu dan umur telur setelah pembuahan.  Kejutan  suhu  panas  yang  digunakan, yaitu  40ºC,  41ºC  dan  42ºC.  Lama  waktu  setelah pembuahan yang digunakan yaitu 80 menit setelah pembuahan,  85  menit  setelah  pembuahan  dan  90 men it  s etelah   p emb u ah an .   M as in g - mas in g kombinasi  diulang  empat  kali,  sehingga  diperoleh 36 satuan percobaan. Perlakuan tanpa kejutan suhu dilakukan  sebagai  pembanding  dan  diulang  empat kali,  sehingga  satuan  percobaan  seluruhnya berjumlah 48 satuan percobaan.
Pematangan gonad induk ikan nila
I n d u k   i k a n   n i l a   j a n t a n   d a n   b e t i n a d i p e l i h a r a   s e c a r a   t e r p i s a h   d a l a m   k o l a m pemeliharaan.  Induk  ikan  tersebut  diberi  pakan berupa  pakan  buatan  bentuk  pellet  komersial, frekuensi pemberian pakan dilakukan sebanyak tiga kali sehari, yaitu pagi, siang dan sore hari.
Seleksi induk ikan nila betina matang gonad Pengamatan kematangan gonad dilakukan secara  teratur  dan  terus  menerus.  Ikan  nila  betina dan  jantan  yang  siap  memijah  dicirikan  dengan genital  papilanya  menonjol  secara  jelas  dan berwarna merah.
Pemijahan induk ikan nila
Induk ikan nila betina dan jantan yang siap memijah  dipindahkan  ke  kolam  pemijahan. Pemijahan  berlangsung  berkisar  antara  2  –  3  jam pada siang hari. Pemijahan terjadi pada pukul 14.00 -  15.00  WIB.  Pemijahan  biasanya  diawali  dengan ikan nila jantan membersihkan dasar kolam dengan mulutnya,  seperti  sedang  mempersiapkan  sarang p e m i j a h a n .   K e m u d i a n ,   i k a n   n i l a   b e t i n a mengeluarkan  telur  sedikit  demi  sedikit  di  dasar kolam.  Setelah  ikan  nila  betina  mengeluarkan sebagian  telurnya,  kemudian  ikan  nila  jantan mengeluarkan  sperma  di  dekat  telur  tersebut. Setelah itu, ikan nila betina segera mengambil telur dan sperma dengan mulutnya.
Fertilisasi buatan dan inkubasi telur ikan nila Proses  pemijahan  berlangsung  beberapa kali, setelah proses pemijahan berakhir, induk ikan nila betina dan jantan dipisahkan. Telur dan sperma ikan  nila  diperoleh  dengan  teknik  stripping,  hal tersebut  dilakukan  setelah  induk  ikan  nila  betina mengeluarkan  telur  untuk  pertama  kalinya.  Telur yang  didapat  selanjutnya  dimasukkan  ke  dalam mangkok  bertutup.  Setelah  mendapatkan  sperma sebanyak  1  ml,  sperma  diencerkan  dengan  NaCl sebanyak  9  ml.  Kemudian  sperma  dicampurkan d e n g a n   t e l u r   s e l a m a   s a t u   m e n i t   d e n g a n menggunakan bulu ayam. Telur yang telah terbuahi dicuci  menggunakan  air  bersih  dan  segera dimasukkan  ke  dalam  gelas  berkaki.  Masing- masing  gelas  berisi  150  telur  dan  diberi  aerasi. Gelas – gelas tersebut diletakkan di perangkat aerasi yang berada dalam bak inkubasi. Media air inkubasi bersuhu  konstan,  yaitu  28ºC  dengan  memberi M e t h y l e n   b l u e   s e b a g a i   p e n c e g a h   j a m u r. Penghitungan jumlah telur terfertilisasi dan jumlah telur  tidak  terfertilisasi  dilakukan  lebih  kurang delapan  jam  setelah  proses  fertilisasi.  Telur  yang tidak terfertilisasi berwarna putih keruh.
Kejutan suhu panas Kejutan  suhu  panas  dilakukan  dalam kotak styrofoam yang  telah  berisi  air  dengan  suhu 40ºC, 41ºC dan 42ºC selama 2,5 menit. Lama waktu setelah pembuahan yang digunakan, yaitu 80 menit setelah  pembuahan,  85  menit  setelah  pembuahan dan 90 menit setelah pembuahan. Telur yang telah diberi kejutan suhu panas, ditetaskan di dalam gelas yang berisi air dengan suhu konstan 28ºC dan diberi aerasi. Telur akan menetas dalam waktu empat hari. Setelah berumur sepuluh hari, larva ikan nila diberi pakan  berupa Artemia selama  satu  minggu. Frekuensi  pemberian Artemia sebanyak  tiga  kali sehari, yaitu pagi, siang dan sore hari. Selanjutnya, larva  ikan  nila  diberi  pakan  berupa  cacing  darah selama  satu  minggu  dengan  pemberian  tiga  kali sehari.
Daya tetas
Perhitungan  yang  dilakukan  untuk mengetahui  besarnya  daya  tetas  seperti  yang dikemukakan oleh Mukti dkk. (2007), yaitu :
Keterangan : HR = hatching rate (daya tetas)
Abnormalitas
P e n g a m a t a n   a b n o r m a l i t a s   d a l a m penelitian ini meliputi bentuk kepala, bentuk tubuh dan bentuk ekor. Perhitungan yang dilakukan untuk mengetahui  besarnya  abnormalitas  seperti  yang dikemukakan oleh Wirawan (2005), yaitu :

## Daya fertilitas
Perhitungan  yang  dilakukan  untuk mengetahui  besarnya  daya  fertilitas  seperti  yang dikemukakan  oleh Yustina  dan  Darmawati  (2003), yaitu :
Keterangan : FR = fertilization rate (daya fertilitas)
Parameter  penunjang  yang  diukur,  yaitu pengukuran  kualitas  air  meliputi  suhu,  pH  dan oksigen  terlarut  yang  dilakukan  setiap  seminggu sekali  pada  pagi  dan  sore  hari  yaitu  pukul  08.00 WIB dan 16.00 WIB.

## Analisis data
Data  dianalisis  secara  statistik  dengan ANOVA untuk mengetahui ada tidaknya perbedaan dari  perlakuan  yang  diberikan.  Jika  dari  analisis ragam  diketahui  bahwa  perlakuan  menunjukkan pengaruh  yang  berbeda  nyata  atau  berbeda  sangat nyata, maka dilakukan Uji Jarak Berganda Duncan u n t u k   m e m b a n d i n g k a n   p e r l a k u a n   y a n g menghasilkan hasil terbaik (Kusriningrum, 1990).

## Hasil dan Pembahasan
Daya tetas larva ikan nila
Daya  tetas  merupakan  perbandingan antara jumlah telur menetas normal dengan jumlah telur  menetas  normal,  cacat  dan  mati  dikalikan dengan 100%. Data rata – rata persentase daya tetas larva ikan nila terdapat pada Tabel 1.
Hasil  penghitungan  Anova  menunjukkan bahwa  kejutan  suhu  berpengaruh  nyata  (p<0,05) terhadap  daya  tetas  larva  ikan  nila.  Lama  waktu setelah  pembuahan  dan  interaksi  antara  kejutan suhu  dan  lama  waktu  setelah  pembuahan  tidak berpengaruh  nyata  (p>0,05)  terhadap  daya  tetas larva  ikan  nila.  Selanjutnya,  untuk  mengetahui tingkat  perbedaan  pada  tiap  perlakuan  atau  untuk mengetahui perlakuan mana yang memberikan hasil yang  terbaik,  maka  dilakukan  uji  lanjutan  dengan menggunakan Uji Jarak Berganda Duncan.
H a s i l   u j i   j a r a k   b e r g a n d a   d u n c a n menunjukkan  bahwa  rata  –  rata  persentase  daya tetas larva ikan nila pada perlakuan C (41ºC) dan D (42ºC)  tidak  berbeda  nyata  (p>0,05)  dengan perlakuan  B  (40ºC),  tetapi  berbeda  nyata  dengan perlakuan A (28°C) (Tabel 1).
Tabel  1.  Data  rata-rata  persentase  daya  tetas  larva ikan  nila  tiap  perlakuan  suhu  dan  lama waktu setelah pembuahan
Keterangan  :  superskrip  yang  berbeda  pada  kolom yang  sama  menunjukkan  hasil  yang berbeda nyata (p > 0,05)
Abnormalitas larva ikan nila Abnormalitas  larva  ikan  nila  dilakukan dengan mengamati keadaan bentuk tubuh larva ikan nila. Data rata – rata persentase abnormalitas larva ikan nila terdapat pada Tabel 2.
Tabel 2. Data  rata-rata  persentase  abnormalitas larva  ikan  nila  tiap  perlakuan  suhu  dan lama waktu setelah pembuahan.
Keterangan  :  superskrip  yang  berbeda  pada  kolom yang  sama  menunjukkan  hasil  yang berbeda nyata (p<0,05)
Hasil  penghitungan  Anova  menunjukkan bahwa  kejutan  suhu  berpengaruh  nyata  (p<0,05) terhadap abnormalitas larva ikan nila. Lama waktu setelah  pembuahan  dan  interaksi  antara  kejutan suhu  dan  lama  waktu  setelah  pembuahan  tidak berpengaruh  nyata  (p>0,05)  terhadap  abnormalitas
larva ikan nila. Hasil tersebut kemudian dilanjutkan dengan  Uji  Jarak  Berganda  Duncan  untuk mengetahui perlakuan mana yang memberikan hasil terbaik terhadap abnormalitas larva ikan nila.
H a s i l   U j i   J a r a k   B e rg a n d a   D u n c a n menunjukkan  bahwa  rata  –  rata  persentase abnormalitas  larva  ikan  nila  pada  perlakuan  B (40ºC) dan D (42ºC) berbeda nyata (p<0,05) dengan perlakuan  C  (41ºC)  dan  A  (28°C),  sedangkan perlakuan C (41ºC) berbeda nyata (p<0,05) dengan perlakuan A (28°C).
Kualitas air yang diukur adalah suhu, pH dan  oksigen  terlarut.  Suhu  air  inkubasi  berkisar antara 26 – 28ºC, pH 7 dan oksigen terlarut sebesar 8 ppm.
Daya  fertilisasi  sangat  ditentukan  oleh kualitas  telur,  sperma,  media  dan  penanganan manusia  (Masithah  dan  Alamsjah,  2002 dalam Handayani, 2007). Rata – rata persentase fertilisasi selama penelitian yaitu sebesar 98,5 persen. Hal ini menunjukkan  kualitas  dan  jumlah  sperma  cukup baik untuk membuahi telur. Telur yang terfertilisasi terlihat  dari  warna  telur  yang  bening.  Hal  tersebut sesuai  dengan  pernyataan  Rustidja  (2004)  bahwa telur yang perkembangannya sehat adalah berwarna transparan  dan  bersih,  sehingga  mudah  dibedakan dengan telur yang mati.
Hasil penelitian daya tetas larva ikan nila menunjukkan  bahwa  perlakuan  tertinggi  terjadi pada  perlakuan  dengan  kejutan  suhu  40°C,  hal  ini sesuai  dengan  penelitian  Pudjirahaju  dkk.  (2006) bahwa suhu kejutan panas yang tepat adalah 40°C. Diduga  suhu  tersebut  masih  dalam  kisaran perkembangan  telur  sehingga  dapat  menghasilkan sigot  diploid.  Kejutan  suhu  juga  diduga  dapat mengakibatkan  kerusakan  pada  benang-benang spindel yang terbentuk saat proses pembelahan sel dalam  telur.  Dugaan  ini  didukung  oleh  pendapat Gervai  et  al.  (1980) dalam Mukti  (2005)  yang menyatakan bahwa kejutan suhu dan tekanan dapat merusak  mikrotubulus  yang  membentuk  spindel selama pembelahan.
Kejutan  suhu  panas  diberikan  setelah terjadinya  peloncatan polar  body II,  di  mana  saat sigot  diploid  atau  sebelum  mengalami  mitosis. Kejutan suhu panas diberikan dengan tujuan untuk mencegah pembelahan sel secara mitosis pada sigot diploid  setelah  terjadi  penggandaan  kromosom, oleh  karena  itu  kromosom  yang  terbentuk  setelah perlakuan  kejutan  panas  ini  menjadi  4n  (Rustidja, 1991 dalam Mukti  2005).  Namun,  saat  diberi kejutan  ada  bagian  dari  sepasang  kromosom homolog  tidak  bergerak  memisahkan  diri  pada
Pengaruh Kejutan Suhu Panas ......

## Suhu
0 A (28 C) (kontrol) 0 B (40 C) 0 C (41 C) 0 D (42 C) 80 menit 1,71 Rerata
0 2,44 1,93 2,46 0 2,85 1,58 2,59 0 2,52 2,18 2,62 c 0 a 2,60 b 1,90 a 2,56
85 menit 1,76
90 menit 1,83 Rata- rata Lama Waktu setelah Pembuahan Suhu 0 A (28 C) (kontrol) 0 B (40 C) 0 C (41 C) 0 D (42 C) 80 menit 90,16
Rerata 92,17 90,50 89,16 88,83 92,17 90,66 85,50 87,16 92,17 91,16 90,49 86,99 b 92,17 ab 90,77 a 88,38 a 87,51
85 menit 88,87
90 menit 90,20 Rata- rata
Lama Waktu setelah Pembuahan
waktu  mitosis.  Satu  gamet  menerima  dua  jenis kromosom  yang  sama  dan  gamet  lainnya  tidak mendapatkan  kromosom.  Jika  salah  satu  gamet yang  menyimpang  bersatu  dengan  gamet  normal pada  waktu  pembuahan,  maka  keturunannya  akan memiliki  jumlah  kromosom  yang  abnormal.  Bila organisme  tersebut  mampu  bertahan  hidup, organisme  tersebut  akan  memperlihatkan  sejumlah gejala  yang  disebabkan  oleh  abnormalnya  jumlah gen  yang  terletak  pada  kromosom  tambahan  atau kromosom yang hilang (Campbell, dkk., 2002).
Hasil  penelitian  abnormalitas  larva  ikan nila  menunjukkan  bahwa  abnormalitas  tertinggi terjadi  pada  perlakuan  yang  diberi  kejutan  suhu 40°C. Abnormalitas  terjadi  diduga  saat  pemberian kejutan  suhu  panas  ada  sebagian  telur  yang  belum bisa  mengembalikan  jumlah  kromosom  yang berkurang  pada  saat  proses  perkembangan  telur yang  diinginkan,  yaitu  menghasilkan  sigot  diploid (2n)  dan  telah  mengalami  modifikasi  kromosom, sehingga  sebagian  telur  yang  menetas  pada  tiap perlakuan  ada  yang  menghasilkan  larva  abnormal.
Dugaan  ini  didukung  oleh  pendapat  Hasanuddin
(1995) dalam Pudjirahaju  dkk.  (2006)  yang menyatakan  bahwa  individu  haploid  akan  menjadi abnormal.
Selain  itu  suhu  terlalu  tinggi  dapat mengganggu  aktivitas  enzim  penetasan  pada  telur dan  mengakibatkan  pengerasan  pada  chorion, sehingga  menghambat  proses  penetasan  telur  dan dapat  mengakibatkan  terjadinya  keabnormalitasan (cacat)  pada  larva  ikan  yang  dihasilkan  (Mukti, 2005).  Biedwell et  al .  (1985) dalam Mukti  (2005) mengemukakan,  larva  ikan  yang  cacat  dapat disebabkan oleh lapisan terluar dari telur ( chorion ) yang mengalami pengerasan, sehingga embrio akan s u l i t   u n t u k   k e l u a r.   S e t e l a h c h o r i o n d a p a t dipecahkan,  maka  embrio  akan  keluar  dalam keadaan tubuh cacat.
Parameter  kualitas  air  berperan  dalam proses  pemijahan  dan  penetasan  telur.  Kualitas  air media  inkubasi  seperti  suhu,  pH  dan  oksigen terlarut  berada  pada  kondisi  optimal.  Hasil pengukuran  suhu  air  inkubasi  selama  penelitian berkisar antara 26 – 28ºC, pH 7 dan oksigen terlarut
8  ppm.  Hal  yang  sama  dikemukakan  oleh Khairuman  dan  Amri  (2003)  bahwa  suhu  optimal untuk pemijahan ikan nila berkisar antara 25 – 30ºC. Faktor  lain  yang  berpengaruh  terhadap  penetasan telur  adalah  pH  dan  oksigen  terlarut.  Kisaran  pH optimal  untuk  penetasan  adalah  6,2  -  7,8  (Yustina dan Darmawati, 2003). Oksigen terlarut dibutuhkan dalam  proses  metabolisme  embrio  di  dalam  telur.
Hasil pengukuran oksigen terlarut selama penelitian sebesar 8 ppm.

## Kesimpulan
Kejutan suhu panas memberikan pengaruh terhadap daya tetas dan abnormalitas larva ikan nila, sedangkan  lama  waktu  setelah  pembuahan  tidak memberikan  pengaruh  terhadap  daya  tetas  dan abnormalitas larva ikan nila, kejutan suhu panas dan lama waktu setelah pembuahan yang menghasilkan persentase  daya  tetas  dan  abnormalitas  tertinggi terdapat pada perlakuan suhu 40°C.
Penggunan  kejutan  suhu  panas  dengan suhu  40°C  dapat  menghasilkan  daya  tetas  dan abnormalitas  tertinggi,  namun  masih  perlu dilakukan  penelitian  lebih  lanjut  terhadap pertumbuhan larva ikan nila setelah proses kejutan suhu.

## Daftar Pustaka
Campbell,  N. A.,  J.  B.  Reece  dan  L.  G.  Mitchell. 2002. Biologi. Edisi Kelima Jilid I. Erlangga.
Jakarta. hal. 289-290.
Handayani,  S.  2007.  Respon  Pemberian  Kelenjar Hipofisa  Ayam Layer Afkir  terhadap  Waktu Latensi,  Derajat  Fertilisasi  dan  Derajat Penetasan  Telur  Ikan  Komet  ( Carassius auratus  auratus ).  Skripsi.  Budidaya  Perairan Fakultas  Kedokteran  Hewan.  Universitas Airlangga. 55 hal.
Herbst,  E.  C.  2002.  Induction  of  Tetraploidy Zebrafish  ( Danio  rerio )  and  Nile  Tilapia ( Oreochromis niloticus ). Thesis. University of North Carolina at Charlotte. 139 p.
Khairuman  dan  Amri.  2003.  Budidaya  Ikan  Nila Secara  Intensif.  Agromedia  Pustaka.  Jakarta. hal. 22.
Mukti, A. T. 1999. Sex Manipulation-Hibridization Progames. Program Pasca Sarjana. Universitas Brawijaya. Malang. 15 hal.
Mukti, A. T. 2005. Perbedaan Keberhasilan Tingkat Poliploidisasi  Ikan  Mas  ( Cyprinus  carpio L i n n . )   m e l a l u i   K e j u t a n   P a n a s . http://journal.discoveryindonesia.com. 23 Juni 2008. 6 hal.
Mukti,  A.  T.,  Rustidja,  S.  B.  Sumitro  dan  M.  S.
Djati. 2001. Poliploidisasi Ikan Mas ( Cyprinus carpio  L. ).  Jurnal  Ilmu-Ilmu  Hayati  Biosain, 1(1):111-123.
Pudjirahaju,  A.,  K.  Bungas  dan  K.  Yuliany.  2006. Pengaruh  Perbedaan  Suhu  Kejutan  Panas terhadap Keberhasilan Gynogenesis pada Ikan Mas  ( Cyprinus  carpio  L. ).  Journal  of  Tropic
Fisheries, 1(2):126-131. Risnandar,  D.  2001.  Pengaruh  Umur  Zigot  pada Saat  Kejutan  Panas  terhadap  Keberhasilan Triploidisasi  serta  Kelangsungan  Hidup E m b r i o   d a n   L a r v a   I k a n   J a m b a l   S i a m ( Pangasius  hypopthalmus ).  Skripsi.  Budidaya Perairan.  Fakultas  Perikanan  dan  Kelautan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. 60 hal.
Rustidja. 2004. Pemijahan Buatan Ikan-Ikan Daerah Tropis. Bahtera Press. Malang. hal. 91.
Shelton  W.  2006.  Artificial  Propagation  of  Nile Tilapia  for  Chromosome  Manipulation.  Dept. of  Zoology.  University  of  Oklahoma,  United States.    pp. 69-70.
Suzu, S., Fujimoto, T., Kimura, S., Yamaha, E and
Arai  K.  2006.  Drastic  Mortality  in  Tetraploid Induction Results from the Elevation if Ploidy M a s u S a l m o n   O n c h o r h y n c u s m a s o u . Aquaculture, 252:147-160.
Wardoyo,  S.  E.  2005.  Peningkatan  Produktivitas Ikan Nila, Oreochromis  niloticus di Indonesia. http://www.dkp.go.id /. 17 Juni 2008. 1 hal.
Wirawan,  I.  2005.  Efek  Pemaparan  Copper  Sulfat (CuSO4) terhadap Daya Tetas Telur, Perubahan Histopatologik Insang dan Abnormalitas Larva Ikan  Zebra  ( Brachydanio  rerio ).  Tesis. Program Pasca Sarjana. Universitas Airlangga. Surabaya. 77 hal.
Yustina, A.  dan  Darmawati.  2003.  Daya Tetas  dan Laju  Pertumbuhan  Larva  Ikan  Hias Betta Splendens di  Habitat  Buatan.  Jurnal  Natur Indonesia    5(2):129-132.
Pengaruh Kejutan Suhu Panas ......