* Penulis untuk korespondensi. e-mail: dedenmatra@apps.ipb.ac.id ISSN 2085-2916  e-ISSN 2337-3652 Tersedia daring http://jai.ipb.ac.id J. Agron. Indonesia, Desember 2021, 49(3):302-307 DOI: https://dx.doi.org/10.24831/jai.v49i3.38250
Respon Fisiologi pada Pembibitan Mangga Kasturi ( Mangifera casturi Kosterm)
terhadap Aplikasi Cahaya LED ( Light Emitting Diode )
The Responses of Physiology in Kasturi Mango (Mangifera casturi Kosterm) Seedling to LED-Artificial Light Application
Alifiya Herwitarahman 1 , Roedhy Poerwanto 2 , Didy Sopandie 2 , dan Deden Derajat Matra 2*
1 Program Studi Agronomi dan Hortikultura, Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor
2 Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor (IPB University), Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680, Indonesia
Diterima 2 November 2021/Disetujui 19 Desember 2021

## ABSTRACT
Kasturi mango (Mangifera casturi Kosterm) is one of the endemic fruit trees from South Kalimantan, with extinct status in the wild by IUCN. Kasturi had a problem with a long period in the nursery due to juvenility. Artificial light such as LED lamps can cut the juvenile phase because it could increase photosynthetic efficiency. This research aimed to determine different responses of physiology seedling using an LED lamp. This research used nested design as the experimental design where Monochromatic LED as the main factor with three levels (red, white, and blue) and accessions as the second factor with three levels (Cuban, Pelipisan and Kasturi) that were nested on the main factor. LED light made different responses for chlorophyll content that red LED made the higher concentration of chlorophyll a, but not for chlorophyll b and the ratio. Blue LED made plants have higher light absorbance, stomata conductance, transpiration, CO 2 interception, and photosynthetic rate in Kasturi accession higher than the other lamps. Blue light made glucose concentration on leaf higher, but fructose higher under white lamp than the other lamps. The application of whi te LED made leaf thicker than the other lamps. Based on this research, different LED light illumination made a different response on Kasturi seedling for cut juvenile phase.

## Keyword: photosynthetic, chlorophyll ratio, fructose, glucose

## ABSTRAK
Mangga Kasturi (Mangifera casturi Kosterm) merupakan mangga endemik Kalimantan Selatan dengan status langka di alamnya berdasarkan IUCN-red list. Kasturi dengan masa juvenil yang panjang sehingga menyebabkan awal pembuahan yang lama. Penggunaan cahaya buatan dengan lampu LED-light emmiting diode diketahui dapat memperpendek juvenilitas karena meningkatkan efisiensi fotosintesis. Penelitian ini bertujuan untuk mempelajari perbedaan respon fisiologi dari bibit mangga Kasturi menggunakan lampu LED. Penelitian ini menggunakan rancangan petak tersarang dengan faktor utama lampu LED dan faktor kedua aksesi sebagai perlakuan yang disarangkan. Faktor utama terdiri dari tiga taraf yaitu LED merah, putih dan biru, sedangkan faktor kedua terdapat tiga taraf yaitu aksesi Cuban, Pelipisan, dan Kasturi. Penggunaan LED memberikan beberapa perbedaan respon terhadap kandungan klorofil, LED merah menunjukan nilai paling tinggi pada kandungan klorofil a, tetapi tidak ada pengaruh pada klorofil b dan rasio klorofil. Penyinaran LED biru menunjukkan nilai absorsi cahaya, konduktansi stomata, transpirasi, dan laju fotosintesis yang lebih tinggi pada aksesi Kasturi. Lampu LED biru meningkatkan kandungan glukosa, sedangkan lampu LED putih membuat kandungan fruktosa yang lebih tinggi dibandingkan lampu lain dan mempengaruhi ketebalan daun yang lebih tebal. Berdasarkan penelitian ini monokromatik LED memberikan pengaruh berbeda pada setiap karakter fisiologis, yang berpengaruh pada percepatan masa juvenil.
Kata kunci: fotosintesis, fruktosa, glukosa, rasio klorofil

## PENDAHULUAN
Mangga  Kasturi  ( Mangifera  casturi Kosterm) merupakan  salah  satu  kekayaan  buah  lokal  Indonesia yang  merupakan  tumbuhan  endemik  Kalimantan  Selatan. Mangga Kasturi memiliki beberapa variasi di alam seperti Kasturi, Pelipisan, Cuban dan Pinari (Matra et al ., 2021), dapat tumbuh mencapai 20 m dengan diameter batang 40- 115 cm (Darmawan, 2015). Mangga Kasturi saat ini sudah masuk pada kategori langka di alam atau extinct in the wild menurut IUCN Red List tahun 2016 (Rhodes dan Maxted, 2016).  Permasalahan  ini  salah  satunya  diakibatkan  oleh mangga Kasturi yang belum memiliki teknik budidaya yang standar, umumnya hanya tumbuh alami di alam dengan biji dan memiliki umur yang cukup lama (Sari, 2014).
Cahaya diperlukan sebagai energi untuk mensintesis karbon  dioksida  dan  air  untuk  menjadi  karbohidrat  dan oksigen pada proses fotosintesis. Cahaya memiliki bentuk sebagai partikel dan gelombang dengan warna cahaya yang paling banyak diserap adalah cahaya biru (430 nm) dan cahaya merah  (660  nm)  (Liu,  2012).  Penggunaan  cahaya  buatan telah  banyak  diaplikasikan  pada  beberapa  jenis  tanaman, seperti menginduksi pembungaan pada tanaman strawberry ( Fragaria x ananassa ‘Pechka’)  dengan  menggunakan cahaya biru (Magar et  al., 2018), membuahkan blueberry pada  saat  tidak  ada  musim  dan  meningkatkan  kandungan antosianin  buah  (Aung et  al., 2014)  dan  mempercepat perkecambahan  dari  biji Dyctoneura  acuminate Blume menggunakan cahaya merah dan merah jauh (Wardani dan Latifah, 2016).
Penelitian  pemberian  cahaya  LED  pada  tanaman tahunan  belum  banyak  dilaksanakan.  Penelitian  ini diharapkan  dapat  memberikan  gambaran  mengenai penambahan cahaya LED pada pembibitan mangga Kasturi dengan mengamati perubahan respon secara fisiologis bibit mangga Kasturi dengan penambahan cahaya pada spektrum cahaya yang berbeda.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  Januari  hingga Juni  2021  di  rumah  paranet  (>90%),  Kebun  Percobaan Leuwikopo, Departemen Agronomi dan Hortikultura, Institut Pertanian Bogor. Pengamatan laboratorium dilaksanakan di Laboratorium  Mikroteknik,  Laboratorium  Terpadu Seed Center ,  Departemen  Agronomi  dan  Hortikultura,  Institut Pertanian Bogor.
Penelitian  dirancang  menggunakan  rancangan  petak tersarang dengan dua faktor yaitu 3 jenis cahaya LED sebagai petak utama (LED merah, LED putih dan LED biru) dan 3 aksesi mangga Kasturi sebagai faktor yang disarangkan (aksesi Cuban, aksesi Pelipisan, dan aksesi Kasturi). Bahan penelitian menggunakan bibit mangga Kasturi dari  3  aksesi  yaitu  Cuban,  Pelipisan  dan  Kasturi,  yang berasal  dari  Kalimantan  Selatan  disemai  pada  tanggal 16  Januari  2020. Bibit  dengan  umur  1  tahun  disimpan  di pembibitan dengan menggunakan paranet 90%. Pemasangan lampu  dilaksanakan  dengan  jarak  antara  lampu  dengan
kanopi tanaman adalah 45 cm. Lampu LED yang digunakan merupakan LED dengan spektrum tunggal terdiri dari LED merah, putih, dan biru, LED dengan tipe strip SMD 5050 modul  6  mata,  dengan  tiap  tanaman  digunakan  5  strip  di atas kanopi, dan disinari selama 20 jam, dari pukul 04.30- 00.30  WIB,  sementara  kondisi  gelap  pada  pukul  00.30- 04.30  WIB,  pada  kondisi  gelap  ini  dipilih  pada  waktu dengan  suhu  harian  terendah.  Intensitas  cahaya  diukur dengan  menggunakan  Licor-250A  sebagai data  logger, yang menampilkan nilai photosynthetically active radiation (PAR) dan nilai Photometric . Li-190R untuk mengukur nilai PAR . Nilai PPFD ( Photosynthetic photon flux density ) tiap jenis LED adalah LED merah: 1.72 µmol . m -1 s -1 ; LED putih: 4.48 µmol . m -1 s -1 ; LED biru: 4.77 µmol . m -1 s -1 .

## Pengukuran Klorofil a dan b
Daun yang dianalisis berukuran 0.56 cm 2 , kemudian daun diekstraksi dengan menggunakan methanol, selanjutnya disimpan pada mikrotube dan ditambahkan metanol kembali hingga  1  mL.  Ekstraksi  daun  kemudian  disentrifugasi selama 2 menit pada 11,200 rpm, setelah 2 menit dihasilkan larutan supernatan dan endapan pellet. Larutan supernatan kemudian dipindahkan 0.2 mL pada microplate, kemudian dibaca  dengan  menggunakan Multiskan ™  FC Microplate photometer dengan pembacaan panjang gelombang A652, A665 (Warren, 2008).

## Pengukuran Laju Fotosintesis
Pengamatan fotosintesis dilakukan dengan menggunakan  Li-6800.  Daun  yang  diamati  adalah  daun yang terpapar sinar secara merata.

## Pengujian Glukosa dan Fruktosa
Daun  dengan  ukuran  0.79  cm 2 dimasukkan  dalam larutan ethanol 80%, 1 mL dengan suhu 80 o C selama 20- 30 menit dan diulangi proses penambahan ethanol hingga tiga kali. Setelah tiga kali ekstraksi didapatkan dua fraksi yang  larut  dan  tidak  mudah  larut.  Fraksi  larut  yang  telah di  keringkan  kemudian  dicampur  dengan  larutan  99% klorofom:  aquades  (v/v),  dengan  campuran  1:2.  Fraksi larut yang telah tercampur disentrifugasi dengan kecepatan 2,200 RPM selama 3 menit, untuk memisahkan gula yang larut pada air serta jaringan lemak dan klorofil yang larut dalam klorofom. Larutan kemudian dipipet sebanyak 3 µl pada  microplate  dan  selanjutnya  dilanjutkan  pengukuran glukosa dan fruktosa berdasarkan pengujian kit K-FRGLQR dilakukan  menggunakan Multiskan ™  FC Microplate photometer dengan panjang gelombang 340 nm (Lanoue et al., 2019).

## Pengukuran Ketebalan Daun dan Stomata
Pengukuran  dilakukan  pada  kerapatan  stomata  dan ketebalan  daun  menggunakan  mikroskop  pada  perbesaran 40x (Hyeneke et al. , 2013) .

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Kandungan Klorofil a dan b
Klorofil memiliki peran sebagai aparatur penangkap cahaya dengan spektrum warna merah dan biru. Berdasarkan percobaan yang telah dilaksanakan pemberian cahaya LED memberikan  pengaruh  nyata  pada  kandungan  klorofil  a, tetapi  tidak  berpengaruh  pada  kandungan  klorofil  b  dan rasio klorofil a/b. Cahaya LED merah memberikan pengaruh terbaik pada kandungan klorofil a (Tabel 1). Cahaya merah umumnya  berperan  pada  perubahan  morfologi  tanaman, sedangkan cahaya biru berperan pada aparatur fotosintesis seperti  pembentukan  kloroplas  dan  formasi  klorofil  (Heo et  al., 2012).  Cahaya  dengan  intensitas  tinggi  cenderung mempercepat  terjadinya  degradasi  pigmen  sehingga dapat menurunkan kandungan klorofil lebih cepat, seperti pada  tanaman  sage  pada  intensitas  tinggi  lebih  cepat mendegradasi  klorofil  (Rezai et  al., 2017).  Cahaya  biru juga diketahui lebih memperbaiki kualitas biosintesis dari klorofil dibandingkan kuantitas dari klorofil pada tanaman selada,  sehingga  mengefesiensikan  fotosisntesis  pada tanaman  (Son  dan  Oh,  2013).  Pada  penelitian  ini  cahaya biru menghasilkan nilai rasio klorofil a/b lebih rendah dari cahaya merah, rasio klorofil yang lebih rendah justru lebih mengefisienkan  pada  penangkapan  cahaya  oleh  tanaman. Penurunan  rasio  ini  akan  meningkatkan  asimilasi  dari karbon dioksida, dan kandungan gula dan pati pada tanaman (Biswal et al., 2012)

## Parameter Fotosintesis
Respon fisiologis dari penambahan cahaya LED pada penelitian  ini  didapatkan  hasil  bahwa  tanaman  memiliki perbedaan respon pada hasil fotosintesis. Beberapa faktor yang  diamati  pada  pengamatan  fotosintesis  adalah:  nilai cahaya yang diterima dan diabsorbsi, konduktansi stomata, laju fotosintesis, dan laju transpirasi tanaman (Gambar 1).
Pengukuran  nilai  laju  fotosintesis  didapatkan  hasil  laju fotosintesis tertinggi ada pada LED biru (Gambar 1C). Laju fotosintesis pada LED biru diketahui memiliki nilai yang lebih tinggi dibanding cahaya lain, hal ini disebabkan LED biru akan menginduksi fotoreseptor cahaya biru yaitu fototropin (Briggs et  al., 2007).  Fototropin  ini  akan  menginduksi perpindahan  kloroplas  dimana  akumulasi  dari  kloroplas yang berkumpul menjadi satu menyebabkan tanaman dapat melakukan  fotosintesis  dalam  kondisi  defisiensi  cahaya (Eckstein et al., 2012). Aplikasi penggunaan LED biru juga menghasilkan pengaruh pada efisiensi laju fotosintesis pada tanaman timun yang laju fotosintesisnya lebih efisien pada penggunaan cahaya biru dibandingkan merah (Hogewoning et  al., 2010)  dan  selada  karena  peran  cahaya  biru  yang menjaga intergritas  kloroplas  (Muneer et  al., 2014).  Pada cahaya merah walaupun nilai cahaya yang diterima paling rendah  tetapi  nilai  fotosintesis  (Gambar  1B)  lebih  efisien dibanding  cahaya  putih  hal  ini  bisa  disebabkan  oleh kandungan  klorofil  cahaya  merah  pada  daun  yang  tinggi (Tabel 1). Kandungan pigmen yang tinggi pada daun akan menyebabkan tanaman mengabsorbsi cahaya lebih efisien, yang akan menyebabkan tanaman menerima keseimbangan karbon pada kondisi cahaya yang defisit.

## Kandungan Glukosa dan Fruktosa
Pengukuran  kandungan  glukosa  dan  frukosa  pada penelitian ini didapatkan hasil spektrum LED berpengaruh pada perubahan kandungan glukosa dan fruktosa, sedangkan aksesi tidak memiliki pengaruh. Penambahan cahaya LED biru  diketahui  memberikan  hasil  terbaik  pada  kandungan glukosa  pada  daun  tanaman,  sementara  pada  kandungan fruktosa terbaik ada pada penambahan LED putih (Tabel 2). Lampu  LED  merah  diketahui  memberikan  pengaruh  nilai glukosa dan fruktosa yang lebih rendah dibandingkan dengan perlakuan cahaya putih dan biru, pada tanaman tomat juga diketahui  aplikasi  LED  merah  tunggal  menurunkan  nilai kandungan glukosa tanaman (Li et al ., 2021). Hal ini bisa
Perlakuan Klorofil a (µg mL -1 ) Klorofil b (µg mL -1 ) Rasio a/b LED Merah 301.10a±9.9 137.53a±4.89 2.20a±0.03 Putih 222.02b±13.34 102.77a±8.73 2.25a±0.12 Biru 212.62b±14.63 100.42a±8.50 2.18a±0.07 Aksesi Cuban 215.54a±17.20 95.16a±8.36 2.32a±0.11 Pelipisan 250.54a±16.15 122.19a±9.18 2.09a±0.05 Kasturi 262.06a±14.44 120.32a±7.40 2.21a±0.06 Interaksi tn tn tn
Tabel 1. Kandungan klorofil a dan b pada tiga aksesi mangga Kasturi setelah penyinaran pada beberapa jenis lampu LED
Keterangan: Nilai tengah yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada hasil uji DMRT dengan taraf 5%. tn = tidak nyata
disebabkan oleh proses oksidasi dari glukosa yang lebih cepat dibanding cahaya lain pada cahaya merah. Daun selada yang disinari  cahaya  merah  akan  meningkatkan  aktifitas  enzim degradasi sukrosa dan menurunkan aktifitas enzim sukrosa sintase yang mempengaruhi kandungan glukosa dan fruktosa (Chen et al., 2019). Kandungan gula yang tinggi juga dapat membantu pergerakan organel sel pada daun seperti pada kloroplas (Banas et al., 2012; Ekstein et al., 2012), sehingga pada Tabel 2 pada cahaya biru nilai kandungan gula yang tinggi  juga  mempengaruhi  fotoreseptor  fototropin  cahaya biru  untuk  melakukan  perpindahan  kloroplas  sehingga terjadi efisiensi laju fotosintesis (Gambar 1).

## Ketebalan Daun dan Kerapatan Stomata
Stomata  berperan  penting  pada  kegiatan  fotosintesis dan transpirasi tanaman, penambahan cahaya LED spektrum tunggal merah, biru dan putih pada bibit mangga Kasturi tidak berbeda nyata pada kerapatan stomata (Tabel 3). Penelitian ini diketahui penambahan cahaya LED tidak memberikan pengaruh nyata, bisa disebabkan oleh intensitas cahaya yang ditambahkan  dalam  intensitas  kecil,  sedangkan  ruangan pembibitan  dalam  kondisi  gelap,  sehingga  tidak  terjadi
pengaruh. Kerapatan stomata akan meningkat pada kondisi intensitas  cahaya  tinggi  dibandingkan  kondisi  ternaungi (Kardiman dan Raebild, 2017). Penambahan cahaya LED juga tidak memberikan pengaruh nyata pada ketebalan daun, tetapi  berdasarkan  hasil  daun  yang  disinari  cahaya  putih lebih tebal dari cahaya lain (Tabel 3). Daun yang terekspos cahaya dengan intensitas tinggi akan menyebabkan jaringan mesofil yang lebih padat dikarenakan adanya penambahan tinggi palisade dan berkurangnya ruang intraseluler. Anatomi daun berperan sebagai kontrol penerimaan cahaya, adanya perubahan sel palisade, dan pemanjangan sel pada bagian adaxial daun akan menyebakan efisiensi dalam penyerapan cahaya merah dan biru (Silvestri et al., 2019). Penurunan nilai ppfd cahaya biru dan peningkatan rasio cahaya merah menurunkan ketebalan daun pada Ficus benjamina (Zheng dan  Van  Labake,  2017).  Pada  penelitian  ini  daun  yang disinari  LED  merah  menghasilkan  ketebalan  daun  yang lebih tipis dibandingkan LED lain, hal ini bisa disebabkan juga  karena  nilai  ppfd  cahaya  yang  terendah.  Intensitas cahaya rendah juga diketahui mempengaruhi ketebalan daun menjadi lebih tipis pada tanaman kedelai yang ditanam pada kondisi defisit cahaya (Muhuria et al., 2006).
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3  P RO P ၱð V ၱ ) Qin 4DEV 0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012 0,014 0,016 0,018 0,02 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 *WF  P RO P ၱð Vၱ 0,000 0,200 0,400 0,600 0,800 1,000 1,200 1,400 1,600 1,800 2,000 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 $  P RO P ၱð Vၱ 0 0,00005 0,0001 0,00015 0,0002 0,00025 0,0003 0,00035 0,0004 0,00045 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 (  P RO P ၱð Vၱ
Gambar 1. Nilai Pengukuran menggunakan fotosintesis pada perlakuan LED merah, putih dan biru di atas kanopi (A) Nilai cahaya yang diterima dan diabsorbsi mangga Kasturi, (B) konduktansi stomata, (C) laju fotosintesis, (D) laju transpirasi. P1V1 = Cuban LED merah; P1V2 = Pelipisan LED merah; P1V3 = Kasturi LED merah; P2V1 = Cuban LED putih; P2V2 = Pelipisan LED putih; P2V3 = Kasturi LED putih; P3V1 = Cuban LED biru; P3V2 = Pelipisan LED biru; P3V3 = Kasturi LED biru
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3  P RO P ၱð V ၱ ) Qin 4DEV 0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012 0,014 0,016 0,018 0,02 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 *WF  P RO P ၱð Vၱ 0,000 0,200 0,400 0,600 0,800 1,000 1,200 1,400 1,600 1,800 2,000 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 $  P RO P ၱð Vၱ 0 0,00005 0,0001 0,00015 0,0002 0,00025 0,0003 0,00035 0,0004 0,00045 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 (  P RO P ၱð Vၱ 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3  P RO P ၱð V ၱ ) Qin 4DEV 0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012 0,014 0,016 0,018 0,02 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 *WF  P RO P ၱð Vၱ 0,000 0,200 0,400 0,600 0,800 1,000 1,200 1,400 1,600 1,800 2,000 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 $  P RO P ၱð Vၱ 0 0,00005 0,0001 0,00015 0,0002 0,00025 0,0003 0,00035 0,0004 0,00045 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 (  P RO P ၱð Vၱ 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3  P RO P ၱð V ၱ ) Qin 4DEV 0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012 0,014 0,016 0,018 0,02 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 *WF  P RO P ၱð Vၱ 0,000 0,200 0,400 0,600 0,800 1,000 1,200 1,400 1,600 1,800 2,000 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 $  P RO P ၱð Vၱ 0 0,00005 0,0001 0,00015 0,0002 0,00025 0,0003 0,00035 0,0004 0,00045 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 (  P RO P ၱð Vၱ A B C D 0.020 0.018 0.016
0.014 0.012 0.010 0.008 0.006 0.004 0.002 0.000 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3  P RO P ၱð V ၱ ) Qin 4DEV 0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012 0,014 0,016 0,018 0,02 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 *WF  P RO P ၱð Vၱ 0,000 0,200 0,400 0,600 0,800 1,000 1,200 1,400 1,600 1,800 2,000 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 $  P RO P ၱð Vၱ 0 0,00005 0,0001 0,00015 0,0002 0,00025 0,0003 0,00035 0,0004 0,00045 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 (  P RO P ၱð Vၱ 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3  P RO P ၱð V ၱ ) Qin 4DEV 0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012 0,014 0,016 0,018 0,02 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 *WF  P RO P ၱð Vၱ 0,000 0,200 0,400 0,600 0,800 1,000 1,200 1,400 1,600 1,800 2,000 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 $  P RO P ၱð Vၱ 0 0,00005 0,0001 0,00015 0,0002 0,00025 0,0003 0,00035 0,0004 0,00045 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 (  P RO P ၱð Vၱ 0.00045 0.00040 0.00035 0.00030
0.00025 0.00020 0.00015 0.00010 0.00005 0.00000
2.000 1.800 1.600 1.400 1.200 1.000
0.800 0.600 0.400 0.200 0.000 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3  P RO P ၱð V ၱ ) Qin 4DEV 0 0,002 0,004 0,006 0,008 0,01 0,012 0,014 0,016 0,018 0,02 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 *WF  P RO P ၱð Vၱ 0,000 0,200 0,400 0,600 0,800 1,000 1,200 1,400 1,600 1,800 2,000 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 $  P RO P ၱð Vၱ 0 0,00005 0,0001 0,00015 0,0002 0,00025 0,0003 0,00035 0,0004 0,00045 P1V1 P1V2 P1V3 P2V1 P2V2 P2V3 P3V1 P3V2 P3V3 (  P RO P ၱð Vၱ

## KESIMPULAN
Penambahan cahaya LED menghasilkan respon yang berbeda pada aspek fisiologis yang dihasilkan. Penambahan cahaya  LED  biru  memberikan  respon  pada  efisiensi fotosintesis, dan kandungan glukosa terbaik pada tanaman. Penambahan  cahaya  LED  putih  memberikan  respon  pada kandungan  fruktosa  terbaik  dan  menyebabkan  daun  lebih tebal dibandingkan dengan sumber cahaya lain. Penambahan cahaya  LED  merah  memberikan  respon  pada  kandungan klorofil a terbaik.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis mengucapkan terima kasih kepada Lembaga Pengelola  Dana  Pendidikan  (LPDP)  Republik  Indonesia sebagai  penyandang  dana  pada  penelitian  dan  pendidikan untuk  Alifiya  Herwitarahman.  Penelitian  ini  dibantu sebagian dari hibah Penelitian Unggulan Perguruan Tinggi (PDUPT), KEMENRISTEK-BRIN Tahun 2019-2021 untuk Deden Derajat Matra.

## DAFTAR PUSTAKA
Aung, T., Y. Muramatsu, N. Horiuchi, J. Che, Y. Mochizuki, I. Ogiwara. 2014. Plant growth and fruit quality of blueberry in a controlled room under artificial light.
J.  Soc.  Hort.  Sci . 83:273-281.  Doi:10.2503/jjshs1. CH-110.
Banas,  A.K.,  C.  Aggarwal,  J.  Łabuz,  O.  Sztatelman,  H. Gabrys.  2012.  Blue  light  signaling  in  chloroplast movements. J. Exp. Bot. 63:1559-1574. Doi:10.1093/ jxb/err429.
Biswal, A.K., G.K. Pattanayak, S.S. Pandey, S. Leelavathi, V.S.  Reddy,  Govindjee,  B.C.  Tripathy.  2012.  Light intensity  dependent  modulation  of  chlorophyll  b biosynthesis  and  photosynthesis  by  overexpression of chlorophyllide a oxygenase in tobacco. Plant Phys. 159:433-449. Doi:10.1104/pp.112.195859.
Briggs, W.R., T.S. Tseng, H.Y. Cho, T.E. Swartz, S. Sullivan, R.A.  Bogomolni,  E.  Kaiseli,  J.M.  Christie.  2007. Phototropins and their LOV domains: versalite plant blue-lights receptors. JIPB . 49:4-10.
Chen, X.L., L.C. Wang, T. Li, Q.C. Yang, W.Z. Guo. 2019. Sugar accumulation and growth of lettuce exposed to different lighting modes of red and blue led light. Sci. Rep . 9:1-10. Doi:10.1038/s41598-019-43498-8.
Darmawan,  A.R.B..  2015.  Review:  Usaha  peningkatan kualitas mangga Kasturi ( Mangifera casturi) dengan modifikasi budi daya tanaman. Pros. Sem Nas Masy Biodiv. Indon. 1:894-899.
Eckstein, A.,  P.  Zieba,  H.  Gabrys.  2012.  Sugar  and  light effects  on  the  condition  of  the  photosynthetic apparatus of Arabidopsis thaliana cultured in vitro. J. Plant Growth Regul . 3:90-101. Doi:10.1007/s00344- 011-9222-z .
Heo,  J.K.,  D.H.  Kang,  H.S.  Bang,  S.G.  Gong,  C.  Chun, K.K. Kang. 2012. Early growth, protein content and phenylalanine ammonia-lyase activity of red curled lettuces  grown  under  different  lighting  condition. Kor.  J.  Hort.  Technol.  30:6-12.  Doi:10.7235/ hort.2012.11118.
Perlakuan Kerapatan stomata (mm -2 ) Ketebalan daun (mm) LED Merah 444.22a±18.74 0.17a±0.007 Putih 466.33a±12.61 0.18a±0.012 Biru 441.16a±16.74 0.17a±0.009 Aksesi ± ± Cuban 445.24a±16.78 0.17a±0.008 Pelipisan 449.66a±17.15 0.18a±0.013 Kasturi 456.80a±15.33 0.16a±0.005 Interaksi tn tn Tabel 3. Kerapatan stomata dan ketebalan daun pada tiga aksesi  mangga  Kasturi  setelah  penyinaran  pada beberapa jenis lampu LED
Keterangan: Nilai tengah yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada  hasil  uji  DMRT  dengan  taraf  5%.  tn  =  tidak nyata
Perlakuan Glukosa (µg mL -1 ) Fruktosa (µg mL -1 ) LED Merah 60.15b±0.78 13.15b±0.63 Putih 62.59ab±0.61 17.34a±1.16 Biru 63.65a±0.75 15.75ab±0.87 Aksesi ± ± Cuban 62.32a±0.97 15.82a±0.88 Pelipisan 61.84a±0.56 15.56a±1.17 Kasturi 62.40a±0.95 14.97a±0.89 Interaksi tn tn
Tabel 2. Kandungan glukosa dan fruktosa pada tiga aksesi mangga Kasturi setelah penyinaran pada berbagai jenis lampu LED
Keterangan: Nilai tengah yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada  hasil  uji  DMRT  dengan  taraf  5%.  tn  =  tidak nyata
Hogewoning, S.W., G. Trouwborst, H. Maljaars, H. Poorter, W.V.  Leperen,  J.  Harbinson.  2010.  Blue  light-dose responses  of  leaf  photosynthesis,  morphology,  and chemical  composition  of Cucumis  sativus grown under different combinations of red and blue light. J Exp Bot . 61:3107-3117. Doi:10.1093/jxb/erq132.
Hyeneke,  E.,  N.L.  Ebengreuth,  I.  Krajcer,  V.  Wolkingwr, M. Muller, B. Zechan. 2013. Dynamic compartment specific  changes  in  glutathione  and  ascorbate levels  in  Arabidopsis  plants  exposed  to  different light  intensities.  BMC  Plant  Biol.  13:1-19.  Doi: 10.1186/1471-2229-13-104.
Kardiman,  R.,  A.  Raebild.    2017.  Relationship  between stomatal  density,  size  and  speed  of  opening  in Sumatran  rainforest  species.  Tree  Physiology.  38: 696-705. Doi:10.1093/treephys/tpxt149.
Lanoue, J., J. Zheng, C. Little, Thibodeau, B. Grodzinki B, X. Hao. 2019. Alternating red and blue light-emiting diodes allows for injury free tomato production with continuous lighting. Front Plant Sci . 10:1-14.
Li, Y., Z. Liu, Q. Shi, F. Yang, M. Wei. 2021. Mixed red and  ble  light  promtes  tomato  seedlings  growth  by influencing  leaf  anatomy,  photosynthesis,  CO 2 assimilation  and  endogenous  hormones.  Sci  Hort. 290:1-13. Doi:10.1016/j.scientia.2021. 110500.
Liu, W. 2012. Light environmental management for artificial protected horticulture.  Agrotechnology 1:1-4. Doi: 0.4172/2168-9881.1000101.
Magar,  Y.G.,  K.  Ohyama,  A.  Noguchi,  W.  Amaki,  S. Furufuji.  2018.  Effects  of  light  quality  during supplemental  lighting  on  the  flowering  in  an everbearing strawberry. Acta Hortic . 1206:279-284 . Doi:10.17660/ActaHortic.2018.1206.39.
Matra, D.D., M.A.N. Fathoni, M. Majidu, H. Wicaksono, A.  Sriyono,  G.  Gunawan,  H.  Susanti,  R.  Sari, F.  Fitmawati,  I.S.  Zulkarnaen,  W.D.  Widodo, R.  Poerwanto . 2021.  The  genetic  variation  and relationship among the natural hybrids of Mangifera casturi Kosterm. Sci Rep. 11(19766). Doi:10.1038/ s41598-021-99381-y.
Muhuria, L., K.N. Tyas, N. Khumaida, Trikoesoemaningtyas,
D.  Sopandie.  2006.  Adaptasi  tanaman  kedelai terhadap  intensitas  cahaya  rendah:  karakter  daun untuk  efisiensi  penangkapan  cahaya.  Bul.  Agron. 34:133-140.
Muneer, S., E.J. Kim, J.S. Park, J.H. Lee. 2014. Influence of  green,  red  and  blue  light  emitting  diodes  on multiprotein  complex  proteins  and  photosynthetic activity  under  different  light  intensities  in  lettuce leaves  ( Latuca  sativa L.).  Int.J.Mol.Sci.  15:4657- 4670. Doi:10.3390/ijma15034657.
Rezai, S., N. Eternadi, A. Nikbath, M. Yousefi, M.M. Majidi. 2018.  Effect  of  light  intensity  on  leaf  morphology photosynthetic  capacity,  and  chlorophyll  content  in sage ( Sage officinalis L). Hort. Sci. Tech . 36:46-57. Doi:10.12972/kjhst.20180006.
Rhodes,  L.,  N.  Maxted.  2016. Mangifera  casturi. The IUCN  Red  List  of  Threatened  Species  2016:
e.T32059A61526819.
Sari,  S.G.  2014.  Kelimpahan  dan  penyebaran  populasi Mangifera casturi  sebagai  usaha  konservasi  dan pemanfaatan  tumbuhan  langka  khas  Kalimanatan Selatan. EnviroScienteae. 10:41-48.
Silvestri,  C.,  M.E.  Caceres,  M.  Ceccarelli,  A.L.  Pica,  E. Rugini, V.  Critofori.  2019.  Influence  of  continuous spectrum  light  on  morphological  traits  and  leaf anatomy of hazelnut plantlets. Front Plant Sci. 10:1- 12. Doi:10.3389/fpls.2019.01318.
Wardani,  F.F.,  D.  Latifah.  2016.  Perkecambahan  biji Dicrtyoneura acuminate Blume. pada cahaya merah dan merah jauh. J. Hort. Indonesia 7:49-55.
Warren,  C.R..  2008.  Rapid  measurement  of  chlorophylls with a microplate reader. J. Plant Nut . 31:1321-1332. Doi:10.1080/01904160802135092.
Zheng,  L.,  M.C. Van  Labeke.  2017.  Long-term  effects  of red  and  blue  light  emiting  diodes  on  leaf  anatomy and  photosynthetic  efficiency  of  three  ornamental pot  plant.  Front  Plant  Sci.  8:1-12.  Doi:10.3389/ fpls.2017.00917.