Toksisitas moluskisida fentin asetat terhadap hematologi dan pertumbuhan ikan nila, Oreochromis s niloticus (Linnaeus, 1758)
[Toxicity of fentin acetate molluscicide on haematological and growth of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758)]
1 Aisyah Lukmini , 2 Eddy Supriyono, 2 Tatag Budiardi
1 Sekolah Pascasarjana, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor
2 Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor Kampus IPB Darmaga Bogor 16680
Diterima: 26 Januari 2016; Disetujui: 29 November 2016
Abstrak
Fentin asetat (C 20 H 18 O 2 Sn) digunakan sebagai pestisida di sawah secara intensif untuk mematikan keong mas ( Pomacea sp.). Tujuan penelitian ini adalah untuk menentukan pengaruh toksisitas subletal moluskisida fentin asetat terhadap ka- rakteristik  hematologi  (eritrosit,  hemoglobin,  hematokrit,  dan  leukosit)  dan  pertumbuhan  yuwana  ikan  nila  ( Oreo- chromis niloticus ). Penelitian dilaksanakan pada bulan Mei sampai Juli 2015 di Laboratorium Lingkungan Departemen Akuakultur,  Institut Pertanian  Bogor.  Penelitian  ini  menggunakan  12  akuarium berukuran  100x50x50 cm 3 .  Ikan  nila berukuran 8,90±0,13 g dipelihara dengan kepadatan 30 ekor dalam volume air 160 L. Ikan uji diberi pakan secara at satiation serta dilakukan penggantian air setiap 24 jam dengan konsentrasi bahan uji yang sama. Rancangan penelitian yang  digunakan adalah  rancangan  acak  lengkap dengan  empat  perlakuan  dan tiga  ulangan dengan  konsentrasi  fentin asetat, yaitu: 0,00 (kontrol); 0,003; 0,008; dan 0,015 mg.L -1 selama 21 hari. Analisis terhadap karakteristik hematologi dan  pertumbuhan  ikan  nila  menggunakan  anova.  Konsentrasi  sublethal  moluskisida  fentin  asetat  berpengaruh  nyata terhadap penurunan karakteristik hematologi dan pertumbuhan ikan nila.
Kata penting: hematologi, Oreochromis niloticus , fentin asetat, pertumbuhan, sublethal

## Abstract
Fentin acetate (C 20 H 18 O 2 Sn) as pesticide is extensively used for killing golden apple snail ( Pomacea sp.) in paddy field . This study was aimed to determine effect of sublethal molluscicide fentin acetate toxicity on the haematological charac- teristics (erythrocyte, hemoglobin, hematocrit, and leucocyte) and growth of juvenile Oreochromis niloticus . This re- search was conducted from May to July 2015 in Environment Laboratory of Aquaculture Department, Bogor Agricul- tural University. The research used twelve glass aquariums of 100x50x50 cm 3 filled with 160 L water and put 30 juve- niles  per  aquarium.  Fish  were  fed  at  satiation during  the  treatment  and  water  exchange  for  every  24 hour.  Research design  was  complete  experimental  randomized  with  four  treatments  and  three  replications of  different  fentin  acetate concentrations i.e. 0.00; 0.003; 0.008; 0.015 mg L -1 for 21 days. The haematological characteristics and growth of fish were  compared  with  ANOVA.  The  result  indicates  that  sublethal  concentration  of  0.003  mg.L -1 fentin  acetate  was significantly (p< 0.05) decrease the haematological characteristics and growth of tilapia.
Keywords: haematology, Oreochromis niloticus , fentin acetat, growth, sublethal

## Pendahuluan
Pencemaran  air  saat  ini  sudah  menjadi masalah global. Salah satu bahan yang diketahui menyebabkan  pencemaran  air  adalah  pestisida. Salah  satu  pestisida  yang  diketahui  bersifat  tok- sik  terhadap  organisme  akuatik  adalah  fentin asetat  dengan  nama  kimia  trifeniltin  asetat  (ber- dasarkan International  Union  Pure  and  Applied Chemistry atau IUPAC). Fentin asetat merupakan senyawa organotin yang banyak digunakan seba- gai pestisida dalam bidang pertanian (Watermann
et al . 2008). Senyawa organotin adalah senyawa organometalik yang disusun oleh satu atau lebih ikatan stannum-karbon (Sn-C).
Penggunaan senyawa organotin  sudah di- larang di beberapa negara di Eropa dan Amerika, sedangkan  di  beberapa  negara  di  Asia,  seperti Indonesia,  Malaysia,  dan  India  penggunaannya masih diizinkan. Di Indonesia, senyawa ini digu- nakan untuk mengendalikan siput murbei ( Poma- cea  canaliculata Lamarck)  di  padi  sawah,  siput trisipan ( Cheritidea sp.) di  tambak  udang  windu _____________________________ Penulis korespondensi
Alamat surel: aisyahlukmini46@gmail.com
dan  bandeng,  dan  siput Parmarion  pupilaris di tanaman  kubis bunga  (Ditjen  PSP 2014).  Menu- rut Cima et al. (1996), fentin asetat dengan dosis 0,6-1,2 kg ha -1 merupakan moluskisida yang pa- ling  efektif  untuk  mengendalikan  populasi  siput murbei di sawah.
Senyawa  organotin  memiliki  toksisitas yang  sangat  tinggi  terhadap  organisme  akuatik. Senyawa  ini  bersifat  lipofilik  atau  mudah  larut dalam  lemak  yang dapat  terserap dan  terakumu- lasi di dalam tubuh organisme sehingga merupa- kan masalah dalam kegiatan budi daya (Cima et al . 1996). Dua jenis senyawa organotin yang di- ketahui  bersifat  sangat  toksik  bagi  organisme akuatik adalah tributiltin dan trifeniltin. Beberapa hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  kedua  se- nyawa ini mampu mengganggu pertumbuhan dan menurunkan tingkat kelangsungan hidup Mytilus edulis (Haggera et  al .  2005),  mampu  menurun- kan frekuensi pemijahan, kualitas telur, dan  per- kembangan  gonad  medaka  ( Oryzias  latipes ) (Zhang et  al. 2008),  dan  mampu  menghambat pertumbuhan dan respon enzim antioksidan pada mikroalga hijau ( Scenedesmus quadricauda ) (Xu et al . 2011).
Kannan  &  Lee (1996) melaporkan bahwa tripheniltin (TPT) yang digunakan sebagai pesti- sida  dan  kemudian  lepas  ke  perairan  akan  me- numpuk  di  sedimen.  Hasil  penelitian  Harino et al .  (2012)  di  tiga  lokasi  perairan  di  Indonesia yaitu  Bitung,  Manado,  dan  Teluk  Jakarta  mene- mukan  bahwa  sedimen  di  tiga  lokasi  tersebut mengandung  tributiltin  dan  tripheniltin  dengan konsentrasi  yang  sangat  tinggi.  Konsentrasi  se- nyawa  tributiltin  yang  terdeteksi  di  tiga  lokasi tersebut masing- masing berkisar antara 160-350 µg kg -1 berat kering (Bitung), 89 µg kg -1 (Mana- do), dan 0,4-52 µg kg -1 (teluk Jakarta). Senyawa tripheniltin  (TPT)  yang  ditemukan  di  Bitung, Manado, dan teluk Jakarta masing-masing berki-
sar antara < 0,1-19 µg kg -1 , 0,1 µg kg -1 , dan <0,1 7,1 µg kg -1 .
Tingginya kandungan fentin asetat baik di sedimen  maupun  di  perairan,  akan  membahaya- kan  organisme  akuatik  yang  hidup  di  dalamnya. Hal ini diperparah dengan fakta bahwa air sungai dan  waduk  sering  dimanfaatkan  sebagai  sumber air pasok budi daya ikan, sehingga akan mengan- cam kegiatan budi daya ikan yang sedang giat di- kembangkan  oleh  masyarakat  Indonesia,  misal- nya  ikan  nila  ( Oreochromis  niloticus ).  Komodi- tas  ini  dibudidayakan  dengan  memanfaatkan  air sungai  dan  waduk  sebagai  sumber  air  pasok  se- hingga  sangat  berpotensi  terpapar  fentin  asetat yang ada di air.
Ikan  yang  terpapar  bahan  pencemar, akan  mengalami  perubahan  pada  karakteristik hematologinya.  Penelitian  Saravanan et  al . (2011)  menunjukkan  adanya  penurunan  jumlah sel  darah  merah,  konsentrasi  hemoglobin,  dan konsentrasi hematokrit pada ikan  mas  ( Cyprinus carpio )  yang  dipapar  insektisida  organoklorin lindan.  Penelitian  Nirmala et  al. (2012)  menun- jukkan  adanya  penurunan  jumlah  sel  darah  me- rah,  hemoglobin,  dan  hematokrit  pada  ikan  nila ( Oreochromis  niloticus )  yang  dipapar  logam berat merkuri (Hg).
Penelitian ini bertujuan untuk mengana- lisis  dampak  pemaparan  fentin  asetat  dengan konsentrasi berbeda terhadap karakteristik hema- tologi yang meliputi eritrosit, hemoglobin, hema- tokrit,  dan  leukosit  pada  ikan  nila Oreochromis niloticus .  Selain  itu  juga  dilakukan  pengamatan terhadap laju pertumbuhannya.

## Bahan dan metode
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  Mei hingga  Juli  2015  di  Laboratorium  Lingkungan dan  Laboratorium  Kesehatan  Ikan  Departemen Budidaya Perairan, Fakultas  Perikanan dan Ilmu
Kelautan,  Institut  Pertanian  Bogor,  Bogor.  Wa- dah uji  yang digunakan adalah akuarium  ukuran 100x50x50  cm 3 sebanyak  12  buah.  Bahan  yang digunakan  untuk  penelitian  ini  adalah  fentin asetat (C 20 H 18 O 2 Sn) dalam bentuk serbuk.
Biota uji yang digunakan adalah ikan nila dengan  bobot  rata-rata  8,90±0,13  g.  Ikan  uji  di- masukkan  pada  tiap  akuarium  perlakuan  yang bervolume  160  L  dan  padat  tebar  30  ekor  per akuarium. Ikan tersebut dipelihara selama 21 hari dengan  pemberian  pakan  berupa  pelet  secara ad satiation . Kualitas air media pemeliharaan diper- tahankan  dengan  mengganti  air  sebanyak  50% dari volume air total tiap harinya dengan air stok yang mengandung konsentrasi fentin asetat yang sesuai dengan masing-masing perlakuan.
Rancangan  yang digunakan dalam peneli- tian  ini  adalah  rancangan  acak  lengkap,  dengan empat  perlakuan  dan  tiga  ulangan,  yaitu  kontrol (tanpa fentin asetat atau 0 ppm), A (fentin asetat 0,003  ppm),  B  (fentin  asetat  0,008  ppm),  dan  C (fentin asetat 0,015 ppm). Penentuan konsentrasi didasarkan  pada  hasil  uji  akut  (LC 50 )  selama  96
jam.
Penimbangan  bobot  ikan  uji  untuk  meng- hitung laju pertumbuhan spesifik dilakukan pada setiap unit percobaan pada awal dan akhir peneli- tian.  Sampling  gambaran  darah  dilakukan  setiap tujuh  hari,  yaitu  pada  hari  ke-0,  7,  14,  dan  21. Sebelum  diambil  darahnya,  ikan  dibius  terlebih dahulu  menggunakan  MS222,  kemudian  darah diambil  dari  bagian  ekor  sebanyak  0,6  ml  dari dua  ekor  ikan  menggunakan syringe steril  beru- kuran 1 ml yang sebelumnya dicuci dengan anti- koagulan (Na sitrat 3,8%). Sampel darah diguna- kan  untuk  pengukuran  total  eritrosit  (TE),  kadar hemoglobin (Hb), kadar hematokrit (Hc) dan to- tal leukosit (TL).
Pengukuran  TE  diawali  dengan  pengam- bilan sampel darah menggunakan pipet yang ber-
isi bulir bewarna merah sampai skala 1, kemudi-
101, lalu dilakukan pengadukan dengan menggo- yangkan pipet yang sama selama 3-5 menit hing-
Tetesan  pertama  dibuang  dan  tetesan  berikutnya diteteskan pada hemasitometer, kemudian ditutup dengan  gelas  penutup  dan  diamati  dengan  mi- kroskop pembesaran 400x. Penghitungan TE di- lakukan  pada  lima  kotak  kecil  dalam  hemasito- meter dengan persamaan sebagai berikut:

## pengenceran
Prosedur pengukuran kadar Hb adalah se- bagai  berikut.  Sampel  darah  dihisap  mengguna- kan pipet Sahli hingga skala 20 mm 3 atau 0,2 ml, kemudian  dimasukkan  ke  dalam  tabung  Hb-me- ter  yang  telah  diisi  dengan  HCl  0,1  N  sampai skala 10 (merah), lalu dilakukan pengadukan dan didiamkan  selama  3-5  menit.  Selanjutnya,  akua- des dimasukkan ke dalam tabung Hb-meter hing- ga terjadi perubahan warna seperti warna larutan standar pada Hb-meter. Skala dibaca dengan me- lihat  permukaan  cairan  dan  dicocokkan  dengan skala  tabung  Sahli  yang  dilihat  pada  skala  jalur g% (kuning) yang berarti banyaknya Hb per 100 ml darah.
Kadar Hc diukur dengan mengambil sam- pel darah menggunakan tabung mikrohematokrit dan disentrifus dengan kecepatan 5000 rpm sela- ma  5  menit.  Kadar  hematokrit  diketahui  dengan membandingkan  panjang  sel  darah  yang  meng- endap  dengan  panjang  total  volume  darah  pada tabung mikrohematokrit
Hematokrit =(volume sel darah merah )/(total volume darah)  x 100
Prosedur  pengukuran  TL  adalah  sebagai berikut.  Sampel darah diambil  menggunakan pi- pet yang berisi bulir bewarna putih sampai skala
- pai  skala  11,  lalu  dilakukan  pengadukan  dengan
menggoyangkan  pipet  selama  3-5  menit  hingga rata. Tetesan pertama  dibuang  dan  tetesan  berikutnya  ditetes- kan  pada  hemasitometer,  kemudian  ditutup  de- ngan  gelas  penutup  dan  diamati  di  bawah  mi- kroskop dengan pembesaran 400x. Penghitungan TL dilakukan pada empat kotak besar dalam he- masitometer  menggunakan  persamaan  sebagai berikut:
pengenceran
Pengukuran  laju  pertumbuhan  spesifik menggunakan persamaan (Giri et al. 2013) seba- gai berikut:
Keterangan:  LPS=  laju  pertumbuhan  spesifik  (%), We=  rata-rata  bobot  ikan  pada  akhir  penelitian  (g), Ws= rata-rata bobot ikan pada awal penelitian (g), t= waktu pemeliharaan (hari)
Data  yang  telah diperoleh  kemudian  dita- bulasi  dan  dianalisis  menggunakan Microsoft Excel dan  SPSS  17.  Analisis  ragam  (ANOVA) dengan uji F pada selang kepercayaan 95% digu- nakan  untuk  menentukan  pengaruh  perlakuan terhadap perubahan karakteristik hematologi dan pertumbuhan.  Apabila  berpengaruh  nyata,  maka dilanjutkan dengan uji Duncan.

## Hasil

## Karakteristik hematologi
Total eritrosit
Total  eritrosit  pada  perlakuan  A  (0,003 ppm), B (0,008 ppm), dan C (0,015 ppm) cende- rung  mengalami  penurunan  dari  awal  sampai akhir penelitian (Gambar 1). Uji statistik menun- jukkan  kontrol  berbeda  nyata  (p<0,05)  dengan ketiga  perlakuan.  Rata-rata  total  eritrosit  pada awal penelitian adalah 1,80 x 10 6 sel mm -3 . Pada hari  ketujuh  total  eritrosit  tertinggi  terlihat  pada perlakuan kontrol (1,83 x 10 6 sel  mm -3 ) sedang- kan yang terendah pada perlakuan C (0,57 x 10 6 sel mm -3 ). Pada hari ke-14 total eritrosit tertinggi masih pada kontrol (1,89 x 10 6 sel mm -3 ) diikuti perlakuan A (0,88 x 10 6 sel mm -3 ), dan B (0,73 x 10 6 sel mm -3 ). Sementara pada hari ke-21, jumlah eritrosit  pada  perlakuan  kontrol  sebesar  1,90  x 10 6 sel mm -3 , sedangkan pada perlakuan A sebe- sar 0,82 x 10 6 sel mm -3 , dan total eritrosit teren- dah pada perlakuan B yaitu 0,56 x 10 6 sel mm -3 . Dari hari ke-14 sampai akhir penelitian, tidak di- peroleh data total eritrosit pada perlakuan C dise- babkan  semua  ikan  perlakuan  pada  konsentrasi ini  mengalami  kematian setelah hari ketujuh pe- nelitian.
Gambar 1. Jumlah eritrosit (x10 6 sel/mm 3 ) ikan nila selama penelitian. Huruf tika atas yang berbeda pada hari yang sama menunjukkan perbedaan nyata (p<0,05)
a a a a a b b b a c b c a d 0 7 14 21 T ot al E ri tr os it (x 10 6 se l m m -3 ) Waktu (hari ke-) K (0 ppm) A (0,003 ppm) B (0,008 ppm) C (0,015 ppm)
.
Gambar 2. Kadar hemoglobin (g%) ikan nila selama penelitian. Huruf tika atas yang berbeda pada hari yang sama menunjukkan perbedaan nyata (p<0,05)
Hemoglobin
Selama  penelitian,  nilai  hemoglobin  pada perlakuan  A,  B,  dan  C  menunjukkan  kecende- rungan menurun (Gambar 2). Rata-rata kadar he- moglobin  pada  awal  penelitian  adalah  7,26  g%. Pada hari ketujuh, nilai hemoglobin tertinggi ter- dapat pada perlakuan K(0 ppm) sebesar 7,8 g%, dan berbeda nyata (p<0,05) dengan perlakuan A (0,003  ppm)  yang  sebesar  4,4  g%  ,  B  (0,008 ppm)  yang  sebesar  3,7  g%,  dan  C  (0,015  ppm) yang  sebesar  5,4  g%.  Pada  hari  ke-14  kontrol (8,36 g%) berbeda nyata (p<0,05) dengan perla- kuan A (4,5 g%) dan B (3,1 g%). Demikian juga pada  pengamatan  hari  ke-21,  perlakuan  A  (2,65 g%)  dan  B  (2,7  g%)  menunjukkan  beda  nyata (p<0,05) terhadap kontrol (9,365 g%).

## Hematokrit
Pada Gambar 3 terlihat bahwa selama pe- nelitian  terjadi  kecenderungan  penurunan  nilai hematokrit  ikan  uji.  Rata-rata  kadar  hematokrit pada awal penelitian adalah 27,79 %. Pada peng- amatan  hari  ketujuh,  nilai  hematokrit  tertinggi
ada pada kontrol (30%) sedangkan yang terendah pada  perlakuan  B  (12,68%).  Pada  pengamatan hari ke-14, kontrol berbeda nyata (p<0,05) terha- dap perlakuan A dan B. Nilai hematokrit perlaku- an  kontrol,  A,  dan  B  masing-masing  sebesar 31,83%, 18,53%, dan 12,34%. Pada pengamatan hari  ke-21  kadar  hematokrit  pada  kontrol (32,27%)  berbeda  nyata  (p<0,05)  dengan  perla- kuan A (12,75%) dan B (5,85%).

## Leukosit
Total leukosit ikan nila pada perlakuan A, B, dan C cenderung terus meningkat hingga akhir penelitian  (Gambar  4).  Rata-rata  total  leukosit pada awal penelitian adalah 7,10 x 10 4 sel mm -3 . Pada hari ketujuh, total leukosit terendah ada pa- da kontrol (7,52 x 10 4 sel mm -3 ) sedangkan yang tertinggi pada perlakuan C (8,81 x 10 4 sel mm -3 ).
Pada pengamatan hari ke-14, kontrol (7,49 x 10 4 sel mm -3 ) menunjukkan beda nyata (p<0,05) ter- hadap perlakuan A (8,42 x 10 4 sel  mm -3 ) dan B (9,35 x 10 4 sel mm -3 ).
a a a a a bc b b a c b b a b 0 2 4 6 8 10 12 0 7 14 21 H em og lo bi n (g % ) Waktu (hari ke-) K (0 ppm) A (0,003 ppm) B (0,008 ppm) C (0,015 ppm)
Gambar 3. Kadar hematokrit (%) ikan nila ( Oreochromis sp.) selama penelitian. Huruf tika atas yang ber- beda pada hari yang sama menunjukkan perbedaan nyata (p<0,05)
Gambar 4. Jumlah leukosit (x10 5 sel mm -3 ) ikan nila selama penelitian. Huruf tika atas yang berbeda pada hari yang sama menunjukkan perbedaan nyata (p<0,05)
Tabel 1 Laju pertumbuhan spesifik pada akhir penelitian Konsentrasi fentin asetat (ppm) LPS (%) 0 (K) 1,03±1,13 a 0,003 (A) 0,08±0,17 a 0,008 (B) -1,70±0,96 b 0,015 (C) -
* huruf tika atas yang berbeda menunjukkan perbedaan nyata (p<0,05)

## Laju pertumbuhan spesifik
Data laju pertumbuhan spesifik (LPS) pa- da akhir penelitian disajikan pada Tabel 1. Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa perlakuan B memiliki laju pertumbuhan yang paling rendah
yaitu  -1,70 %. Hasil analisis statistik menunjuk- kan bahwa perlakuan B berbeda nyata dengan kontrol (p<0,05). Pemberian fentin asetat dengan konsentrasi 0,008 ppm terbukti mampu menurun- kan laju pertumbuhan spesifik juvenil ikan nila.
a a a a a b b b a c c c a bc 0 5 10 15 20 25 30 35 40 0 7 14 21 H em at ok ri t ( % ) Hari ke- K (0 ppm) A (0,003 ppm) B (0,008 ppm) C (0,015 ppm) a a a ab
ab b ab b c b 0.00 2.00 4.00 6.00 8.00 10.00 12.00 0 7 14 21 T ot al L eu ko si t (x 10 4 s el m m -3 ) Waktu (hari ke-) K (0 ppm) A (0,003 ppm) B (0,008 ppm) C (0,015 ppm)

## Pembahasan
Parameter  darah  merupakan  suatu  indika- tor  adanya  perubahan  kondisi  kesehatan  ikan, baik  karena  faktor  infeksi  (mikroorganisme) maupun karena faktor non infeksi oleh lingkung- an,  genetik,  dan  nutrisi.  Hasil  penelitian  ini  me- nunjukkan  terjadinya  penurunan  total  eritrosit, kadar  hemoglobin,  dan  kadar  hematokrit  seiring dengan  bertambahnya  konsentrasi  fentin  asetat pada  media  pemeliharaan.  Hasil  pemeriksaan gambaran darah pada hari ke-7, ke-14 dan ke-21 menunjukkan  adanya  penurunan  jumlah  total eritrosit, kadar hemoglobin, dan kadar hematokrit pada  semua  perlakuan  yang  diberi  penambahan fentin asetat. Menurut Da Cuna et al . (2011), per- ubahan  kondisi  hematologi  yang  meliputi  penu- runan total eritrosit, kadar hemoglobin, dan kadar hematokrit merupakan ciri anemia.
Anemia bisa disebabkan berkurangnya pe- lepasan  eritrosit  di  dalam  sirkulasi  darah.  Salah satu organ yang berperan dalam produksi eritrosit adalah ginjal. Ginjal merupakan organ hematoge- nik paling penting pada ikan. Ginjal bagian ante- rior  adalah  organ  utama  pembentuk  darah  pada teleostei.  Terjadinya  gangguan  pada  ginjal  me- nyebabkan  produksi  darah  juga  terganggu  yang selanjutnya  menyebabkan  penurunan  terhadap produksi  eritrosit.  Hasil penelitian  Lukas  (2010) menunjukkan  terjadinya  mineralisasi,  hemorage, dan edema pada ginjal ikan  nila  yang dipelihara pada  media  yang  mengandung  0,3  mg  L -1 Cu. Kerusakan  ini  diikuti  dengan  adanya  penurunan total  eritrosit,  kadar  hemoglobin,  dan  kadar  he- matokrit  yang  disebabkan  kerusakan  jaringan ginjal  dan  insang  ikan  akibat  akumulasi  Cu. Benli  &  Ozkul  (2010)  menemukan  terjadinya perubahan  histologi  pada  organ  hati  ikan  nila yang  dipapar  insektisida  fenitrothion  selama  96 jam.  Kerusakan  tersebut  berupa  degenerasi  hi- drophyl  ( cloudy  swelling ),  degenerasi  hidropik,
dan infiltrasi lemak, sedangkan di ginjal ditemu- kan adanya hiperemia dan hemorage.
Terjadinya  anemia  juga  terkait  dengan adanya  gangguan  dalam  penyerapan  zat  besi (Fe).  Senyawa  organotin  mampu  menghambat sintesis Hb dengan cara mengganggu penyerapan zat  besi  (Fe) (Boyer  1989).  Mineral  Fe  merupa- kan  unsur  esensial  yang  berperan  dalam  sintesis hemoglobin  (Setiawati et  al .  2007).  Berkurang- nya  zat  besi  di  dalam  darah  akan  menyebabkan berkurangnya  konsentrasi  hemoglobin  di  dalam darah. Penurunan kadar hemoglobin menandakan bahwa kemampuan  ikan untuk menyediakan ok- sigen yang cukup bagi jaringan tubuh mengalami keterbatasan sehingga terjadi penurunan aktivitas fisik (Wepener et al . 1992).
Hasil  penelitian  ini  menunjukkan  bahwa jumlah  leukosit  meningkat  seiring  dengan  pe- ningkatan  konsentrasi  fentin  asetat  pada  media pemeliharaan (Gambar 4). Hal ini selaras dengan hasil  penelitian  Harabawy  &  Ibrahim  (2014) yang  menunjukkan  terjadinya  peningkatan  total leukosit secara signifikan pada ikan lele ( Clarias gariepinus )  yang  dipapar  pestisida  carbofuran selama 35 hari. Peningkatan ini mungkin dikare- nakan  respon  protektif  dari  tubuh  ikan  selama kondisi stres yang diakibatkan oleh paparan fen- tin  asetat.  Kenaikan  leukosit  mengindikasikan terjadinya  kerusakan  akibat  infeksi  jaringan  tu- buh, stres fisik yang parah, dan leukositosis. Leu- kositosis adalah keadaan dengan jumlah sel darah putih dalam darah meningkat melebihi nilai nor- mal.  Peningkatan  leukosit  juga  bisa  menjadi gambaran bahwa tubuh ikan mampu menghadapi stres  dengan  cara  membentuk  lebih  banyak  leu- kosit (Abhijith et al . 2012).
Hasil  penelitian  menunjukkan  semakin tinggi  konsentrasi  fentin  asetat,  maka  laju  per- tumbuhan  ikan  nila  semakin  rendah  (Tabel  1).
Laju pertumbuhan paling tinggi ada pada kontrol
sedangkan  yang terendah ada pada perlakuan B. Rendahnya laju pertumbuhan pada penelitian ini diduga  karena  menurunnya  jumlah  eritrosit  dan hemoglobin (Gambar 1 dan 2). Hemoglobin berf- ungsi  mengikat  oksigen  yang  digunakan  dalam proses  katabolisme  untuk  menghasilkan  energi. Kemampuan mengikat oksigen dalam darah ber- gantung  kepada  jumlah  hemoglobin  dalam  sel darah merah. Kadar hemoglobin yang rendah pa- da  perlakuan  penambahan  fentin  asetat  menye- babkan  metabolisme  menjadi  terhambat  dan energi  yang  dihasilkan  menjadi  sedikit.  Hal  ini berdampak pada pertumbuhan ikan menjadi ren- dah.  Penurunan  total  eritrosit  akan  mengakibat- kan  suplai  makanan  ke  sel,  jaringan  dan  organ akan  berkurang  sehingga  metabolisme  akan  ter- hambat (Bastami et al . 2009)
Penurunan  laju  pertumbuhan  juga  terjadi pada ikan yang dipaparkan dengan berbagai jenis pestisida.  Ikan  mas  setelah  dipaparkan  moluski- sida niklosamida pada konsentrasi sublethal 0,01; 0,03 dan 0,05 ppm selama 12 minggu memperli- hatkan  penurunan  laju  pertumbuhan  spesifik  pa- da semua perlakuan (Supriyono et al . 2013). Ikan nila yang dipapar dua jenis pestisida yaitu dime- thoate (20, 10 dan 5 mg L -1 ) dan malathion (2,0;
1,0  dan  0,5  mg  L -1 )  mengalami  penurunan  laju pertumbuhan  dan  perubahan  kondisi  hematologi berupa  penurunan  jumlah  eritrosit,  kadar  hemo- globin, dan kadar hematokrit (Sweilum 2006).

## Simpulan
Ikan  nila  yang dipapar moluskisida  fentin as
ppm  menunjuk- kan  penurunan  laju  pertumbuhan  yang  disebab- kan  oleh  penurunan  total  eritrosit,  kadar  hemo- globin,  kadar  hematokrit,  dan  peningkatan  total leukosit.

## Daftar pustaka
Abhijith BD, Ramesh M, Poopal RK. 2012. Sub- lethal  toxicological  evaluation  of  methyl parathion  on  some  haematological  and biochemical parameters in an Indian major carp Catla  catla . Comparative  Clinical Pathology , 21(1): 55 61.
Bastami  K,  Darvish,  Moradlou  AH,  Zaragabadi AM,  Salehi  MSV,  Shakiba  MM.  2009. Measurement  of  some  haematological characteristics of the wild carp. Compara- tive Clinical Pathology , 18 (9): 321 323
Benli  ACK,  Özkul  A.  2010.  Acute  toxicity  and histopathological effects of sublethal feni- trothion on Nile tilapia, Oreochromis nilo- ticus . Pesticide  Biochemistry  and  Physio- logy , 97(1): 32 35.
Boyer  I.  1989.  Toxicity  of  dibutyltin,  tributyltin and other organotin compounds to humans and  to  experimental  animals. Toxicology ,
55(3): 253-298.
Cima F, Ballarin L, Bressa G, Martinucci G, Bu- righel P. 1996. Toxicity of organotin com- pounds  on  embryos  of  a  marine  inverte- brate  ( Styela  plicata ;  Tunicata). Ecoto- xicology and Environmental Safety , 35(2):
174 182.
Da Cuna RH ,Va´zquez GR, Piol MN, Guerrero NV,  Maggese  MC  Lo  Nostro  FL.  2011. Assessment  of  the  acute  toxicity  of  the organochlorine  pesticide  endosulfan  in Cichlasoma  dimerus (Teleostei,  Percifor- mes). Ecotoxicology  and  Environmental Safety , 74(4):1065-1073.
Direktorat  Jenderal  Prasarana  dan  Sarana  Perta- nian (Ditjen PSP). 2014. Pestisida pertani- an dan kehutanan terdaftar 2014 [Internet]. [diunduh 24 Januari 2015]. Tersedia pada http://psp.pertanian.go.id/
Giri SS, Sukumaran V, Oviya M. 2013. Potential probiotic Lactobacillus  plantarum VSG3 improves  the  growth,  immunity,  and  di- sease resistance of tropical freshwater fish, Labeo rohita. Fish and Shellfish Immuno- logy , 34(2): 660-666.
Haggera JA, Depledge MH, Galloway TS. 2005. Toxicity  of  tributyltin  in  the  marine  mol- lusk Mytilus  edulis . Marine  Pollution Bulletin , 51(8-12): 811 816.
Harabawy  ASA,  Ibrahim  ATA.  2014.  Sublethal toxicity  of  carbofuran  pesticide  on  the African  catfish Clarias  gariepinus (Burc- hell,1822)  :  Hematological,  biochemical and  cytogenetic  response. Ecotoxicology and Environmental Safety , 103: 61 67.
Harino H, Arifin Z, Rumengan IFM, Arai T, Ohji M, Miyazaki N. 2012. Distribution of An- tifouling  Biocides  and  Perfluoroalkyl Compounds  in  Sediments  From  Selected Locations  in  Indonesian  Coastal  Waters. Archives of Environmental Contamination and Toxicology , 63(1): 13 21.
Kannan  K,  Lee  RF.  1996.  Triphenyltin  and  its degradation  products  in  foliage  and  soils from  sprayed  pecan  orchards  and  in  fish from  adjacent  ponds. Environmental Toxicolology and Chemistry , 15(9): 1492 1499.
[KKP]  Kementerian  Kelautan  dan  Perikanan. 2014. Kelautan dan Perikanan dalam Ang- ka  2014  [Internet].  [diunduh  24  Januari 2015].  http://sidatik.kkp.go.id.
Lukas.  2010.  Toksisitas  logam  berat  Cu  pada berbagai  pH  terhadap  konsumsi  oksigen dan respon hematologi ikan nila gift ( Ore- ochromis sp.).  Tesis.  Institut  Pertanian Bogor. 63 hlm.
Nirmala K, Hastuti YP, Yuniar V. 2012. Toksisi- tas merkuri (Hg) dan tingkat kelangsungan hidup, pertumbuhan, gambaran darah, dan kerusakan organ pada ikan nila Oreochro- mis  niloticus . Jurnal  Akuakultur  Indone- sia , 11(1): 34-48.
Saravanan  M,  Kumar  KP,  Ramesh  M.  2011.
Haematological  and  biochemical  res- ponses of freshwater teleost fish Cyprinus carpio (Actinopterygii:  Cypriniformes) during  acute  and  chronic  sublethal  expo- sure  to  lindane. Pesticide  Biochemistry and Physiology, 100 (11): 206 211.
Setiawati M, Mokoginta I, Suprayudi MA, Man- alu W. 2007. Pengaruh penambahan mine- ral Fe pada pakan ikan terhadap status ke-
sehatan  ikan  kerapu  bebek  ( Cromileptes altivelis ). Jurnal Perikanan dan Kelautan , 12(1): 55-63.
Supriyono  E,  Yosmaniar,  Nirmala  K,  Sukenda. 2013. Toksisitas  moluskisida  niklosamida terhadap  pertumbuhan  dan  kondisi  histo- patologi  juwana  ikan  mas  ( Cyprinus carpio ). Jurnal Iktiologi Indonesia , 13(1): 77-84
Sweilum MA. 2006. Effect of sub-lethal toxicity of  some  pesticides on  growth  parameters, haematological  properties  and  total  pro- duction of Nile tilapia ( Oreochromis nilo- ticus L) and water quality of ponds. Aqua- culture Research , 37(11): 1079-1089.
Watermann  B,  Grote  K,  Gnass  K,  Kolodzey  H, Thomsen  A,  Appel  KE,  Carnevali  DC, Oehlmann  US.  2008.  Histological  altera- tions  in  ovaries  of  pubertal  female  rats induced by triphenyltin. Experimental and Toxicologic Pathology , 60(4-5):313-321.
Wepener W, van Vuren JHJ, du Preez HH. 1992. Effect  of  manganese  and  iron  at  neutral pH values on the haematology of the ban- ded  tilapia, Tilapia  sparrmanii . Environ- mental Contamination and Toxicology, 49: 613-619.
Xu  J,  Li  M,  Mak  NK,  Chen  F,  Jiang  Y.  2011. Triphenyltin  induced  growth  inhibition and  antioxidative  responses  in  the  green microalga Scenedesmus  quadricauda . Ecotoxicology , 20(1): 73-80.
Zhang Z, Hu J, Zhen H, Wu X, Huang C. 2008. Reproductive  Inhibition  and  Transgenera- tional Toxicity of Triphenyltin on Medaka ( Oryzias latipes ) at Environmentally Rele- vant  Levels. Environmental  Science  & Technology , 42(21): 8133-8139.