https://doi.org/10.22487/kovalen.2023.v9.i1.16098
Sintesis dan Karakterisasi Cangkang Kapsul Non Gelatin dari Rumput Laut ( Eucheumma cottonii ) dan Kaktus Koboi (Cereus peruvianus) untuk Sistem Penghantaran Obat
[Synthesis and Characterization of Non Gelatinized Capsule Shells from Seaweed ( Eucheumma cottonii ) and Koboi Cactus (Cereus peruvianus ) for Drug Delivery Systems]
Micha Mahardika  , Ninik Triayu Susparini, Dany Dewaldo, Boima Situmeang, Fauzan Amin
Jurusan Kimia, Sekolah Tinggi Analis Kimia Cilegon, Jl. KH. Wasyid No. 6, Cilegon, Banten, Indonesia
Abstract. Research on drug delivery systems continues to develop,  including making the latest formulations on capsule  shells  as  a  medium  for  drug  delivery.  The  effort  that  has  been  done  was  developing  non-gelatine drug delivery  materials  made  from  the  combination  of  seaweed  and  cactus.  The  main  component  in  making  gel  on seaweed and cactus is the polysaccharide pectin. This study aims to make and determine the characterization of capsule shells from a combination of seaweed and cactus. Capsule shells are made from a combination of pectin extracts  from  seaweed  and  cactus  with  5  different  ratios  of  0:4  (A),  1:3  (B),  2:2  (C),  3:1  (D),  and  4:0  (E).  The characterization involved weight uniformity test, disintegration time test, water swelling test, and dissolution test. Pectin  from  green  seaweed  and koboi cactus  weighed  235  g  and  75  g.  The  capsule  shell  weights  based  on Farmakope Indonesia sixth edition were 307.2, 311.6, 309.7, 304.6, and 308.7 mg. The capsule shell disintegration times, based on Farmakope Indonesia sixth edition, 2020, were 15,16, 14, 21, and 12 minutes, and the best result of the water swelling test was C capsule (2:2) of 666.7%. The results of the capsule shell dissolution test showed that the reduction of the capsule shells did not exceed 10% for 30 minutes according to the Farmakope Indonesia sixth edition. The capsule shells made from a combination of seaweed and cactus can be used as material in drug delivery systems. Non-gelatinized capsule shell which is expected to have anti-inflammatory activity.
Keywords: Cefadroxyl, koboi cactus, seaweed, drug delivery system
Abstrak. Penelitian  tentang  sistem  penghantaran  obat  terus mengalami  perkembangan  salah  satunya  yaitu membuat formulasi terbaru cangkang kapsul sebagai media penghantar obat. Upaya yang dilakukan yaitu dengan mengembangkan  material  penghantar  obat  non-gelatin  yang  terbuat  dari  perpaduan  rumput  laut  dan  kaktus. Komponen  utama  dalam pembentuk  gel  pada  rumput laut dan  kaktus  berupa polisakarida  pektin.  Penelitian  ini bertujuan  untuk  membuat  serta  mengkarakterisasi  cangkang  kapsul  dari  perpaduan  rumput  laut  dan  kaktus. Cangkang  kapsul  dibuat  dari  kombinasi  antara  ekstrak  pektin  dari  rumput  laut  dan  kaktus  dengan  5  macam perbandingan  yaitu  0:4  (A),  1:3  (B),  2:2  (C),  3:1  (D),  dan  4:0  (E).  Karakterisasi  yang  dilakukan  meliputi  uji keseragaman bobot, uji waktu hancur, uji swelling air dan uji disolusi . Pektin dari rumput laut hijau dan kaktus koboi memiliki bobot 235 g dan 75 g. Hasil bobot cangkang kapsul sesuai dengan Farmakope Indonesia edisi VI karena memeiliki standar deviasi kurang dari 2% berturut-turut 307,2; 311,6; 309,7; 304,6; dan 308,7 mg. Waktu hancur cangkang kapsul sesuai standar Farmakope Indonesia edisi VI Tahun 2020 yaitu kurang dari 30 menit, berturut- turut  15;  16;  14;  21;  dan  12  menit,  serta  hasil  uji swelling air  terbaik  pada  kapsul  C  (2:2),  yaitu  666,7%.  Hasil pengujian  disolusi  cangkang  kapsul  menunjukkan  bahwa  pengurangan  cangkang  kapsul  tidak  melebihi  10% selama  30 menit  sesuai  dengan  Farmakope  Indonesia  edisi  VI.  Cangkang  kapsul  yang  terbuat  dari  perpaduan rumput laut dan kaktus dapat digunakan sebagai material dalam sistem penghantaran obat . Cangkang kapsul non gelatin yang diharapkan memiliki aktivitas antiinflamasi.
Kata kunci : Cefadroxyl, kaktus koboi, rumput laut, sistem penghantar obat
Diterima:  27 Oktober 2022, Disetujui: 26 Januari 2023
Sitasi:   Mahardika, M., Susparini, N.T., Dewaldo, D., Situmeang, B., Amin, F. (2023). Sintesis dan Karakterisasi Cangkang Kapsul Non Gelatin  dari  Rumput  Laut  ( Eucheumma  cottonii) dan  Kaktus  Koboi  ( Cereus  peruvianus )  untuk  Sistem  Penghantaran  Obat. KOVALEN: Jurnal Riset Kimia , 9(1): 1-12.
https://bestjournal.untad.ac.id/index.php/kovalen
 Coressponding author E-mail: micha.mahardika@gmail.com

## Mahardika et al.

## LATAR BELAKANG
Perkembangan  sains  telah  mendorong ditemukannya  beberapa  teknologi  mutakhir untuk  sistem  pengobatan  yang  efektif  dan aman  bagi  masyarakat.  Untuk  mengatasi berbagai penyakit, diperlukan sistem penghantaran  obat  yang  tepat  supaya  obat dapat  bekerja  efektif  dan  tepat  sasaran. Efektivitas  obat  dapat  dilihat  dari  profil  kadar obat  dalam  darah.  Sistem  penghantaran  obat yang  ideal  adalah  sistem  yang  jika  diberikan dalam dosis tunggal dapat menghantarkan obat sedini  mungkin,  memberikan  efek  farmakologi selama  mungkin  dan  menghantarkan  obat tepat sasaran (Utama & Riyupi, 2017).
Beberapa  macam  metode  penghantaran obat diantaranya secara oral, parenteral, lokal, rektal,  transdermal  serta  inhalasi  (Shargel et al. , 2007). Kapsul berada pada urutan pertama dalam pengembangan obat oral karena kapsul dipandang  mudah  dalam  pembuatannya  jika dibandingkan dengan sediaan lainnya.
Kelebihan kapsul lainnya antara lain, kombinasi bahan yang bervariasi sesuai dengan kebutuhan pasien, dosis yang lebih tepat, tidak berbau  dan  hambar  sehingga  mudah  untuk ditelan  serta  dilepaskan dalam  waktu  yang sesuai (Hermanto, 2015).
Produksi  cangkang  kapsul  mayoritas menggunakan  gelatin  sebagai  bahan  baku kimia,  namun  produksi  gelatin  dunia  terbesar berasal dari bahan baku kulit babi, yakni 44,5%, kedua  dari  kulit  sapi  27,6%,  ketiga  dari tulang 26,6% dan sisanya berasal dari selainnya 1,3% (Harianto & Peranginangin , 2008). Hal tesebut membatasi konsumen vegetarian, umat muslim,  dan  umat  hindu  yang  tidak  dapat mengkonsumsinya.  Bahan  baku  pembuatan gelatin tersebut juga memiliki resiko kontaminasi virus yang menyebabkan penyakit.
Terdapat  banyak  alternatif  bahan  nabati yang dapat digunakan untuk membuat cangkang kapsul, diantaranya rumput laut dan kaktus  yang  mengandung  pektin  yang  dapat membentuk  gel  sebagai  pengganti  gelatin untuk  membuat  cangkang  kapsul.  Sativa et  al (2014)  yang  menggunakan  karagenan  dan kaktus  untuk  uji  antiinflamasi  pada  tikus  yang menyimpulkan  bahwa  penggunaan  variasi konsentrasi  ekstrak  kaktus  dengan  kadar  5%, 10% dan 15% pada sediaan gel. Mahardika et al (2021) melakukan sintesis cangkang kapsul non  gelatin  yang  terbuat  dari  rumput  laut  dan daun  cincau  dengan  variasi  rumput  laut  dan daun cincau (0:4); (1:3); (2:2); (3:1); dan (4:0). Cangkang kapsul yang diperoleh diuji keseragaman  bobot,  waktu  disolusi  serta derajat swelling . Hasil terbaik cangkang kapsul yang  diperoleh  yaitu  dari  variasi  komposisi bahan  sebesar  3:1  dengan  nilai  hasil  uji swelling sebesar 643,4%.
Penelitian ini bertujuan untuk mendapatkan  cangkang  kapsul  non  gelatin dengan  komposisi  campuran  kaktus  dan rumput laut yang terbaik. Cangkang kapsul non gelatin  yang  didapatkan  diharapkan  memiliki aktivitas antiinflamasi.

## METODE PENELITIAN

## Bahan dan Peralatan
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini antara  lain blender ,  cawan  krus,  desikator, oven , tanur, neraca analitik Fujitsu FSR-B620, hot  plate ,  spektrofotometer  UV-Vis  Shimadzu 1800, FTIR Shimadzu 8400 dan alat-alat gelas. Bahan-bahan  yang  digunakan  dalam penelitian ini antara lain rumput laut ( Eucheumma  cottonii) ,  kaktus  koboi  ( Cereus peruvianus) , etanol  70%,  NaCl  Merck,  air destilata,  indikator  fenolftalein,  NaOH  Merck
Mahardika et al.
0,1 N, NaOH Merck 0,25 N, HCl Merck 0,25 N, HCl  Merck  0,1  N,  sorbitol  Merck,  Na-CMC
Sigma
Aldrich, cefadroxil monohidrat Cefadroxil, dan larutan penyangga pH 3 Merck.

## Prosedur Penelitian
Pada  penelitian  ini  akan  disintesis cangkang  kapsul  non  gelatin  dari  campuran rumput laut dan kaktus yang dapat dilihat pada Gambar 1. Pektin dibuat dari kaktus koboi dan rumput  laut,  yang  kemudian  pektin  dianalisis terlebih dahulu sebelum dicampurkan ke dalam pembuatan  cangkang  kapsul  non  gelatin. Pembuatan  cangkang  kapsul  non  gelatin menggunakan  pektin  dari  kaktus  dan  rumput laut  yang  kemudian  dikombinasikan  dengan aquadest, sorbitol, Na-CMC. Cangkang kapsul non  gelatin  tersebut  kemudian  dikarakterisasi dengan cara uji keseragaman bobot cangkang kapsul,  uji  waktu  hancur,  uji  swelling  air,  uji disolusi.
Gambar 1 . Diagram alir penelitian

## Pembuatan pektin dari rumput laut hijau
Rumput  laut  (semua  bagian) yang digunakan sebanyak 500 g. Rumput laut hijau dicuci  dengan  air  kemudian  ditambahkan aquadest .  Rumput  laut  hijau  dihaluskan menggunakan blender dan  dimasak  sampai mengental  kemudian  d isaring  dan  diambil
filtratnya. Filtrat tersebut didiamkan selama  24 jam sampai terbentuk gel rumput laut. Setelah itu, gel rumput laut dikeringkan pada suhu 50 o C selama ±5jam dengan bantuan oven.

## Pembuatan pektin dari kaktus
Kaktus yang digunakan ialah kaktus koboi sebanyak 230 g. Duri pada kaktus sebelumnya dihilangkan sebelum memasuki tahap pengeringan. Kaktus
dikeringkan menggunakan oven ,  kemudian  digiling  hingga hancur.  Serbuk  kaktus  kemudian  dimaserasi menggunakan  1L  etanol  70%  selama  24  jam. Selanjutnya  dipisahkan  dan  diambil  filtratnya. Pelarut  diuapkan  dengan rotary  vacuum evaporator .  Hasil  dari  ekstraksi  tersebut kemudian  dipekatkan  sampai  ekstrak  menjadi kental dengan bantuan waterbath .

## Analisis pektin
a.  Analisis kadar air (susut pengeringan)
Sampel  sebanyak  1  g  ditempatkan  ke dalam cawan krus, kemudian dipanaskan dalam  oven  pada  suhu  100°C  selama  ±6 jam.  Didinginkan  cawan  krus  di  dalam desikator,  kemudian  diukur  selisih  bobot cawan  kosong  dan  bobot  cawan  berisi sampel (Fitria, 2013).
b.  Analisis kadar abu (sisa pemijaran)
Sampel  sebanyak  1  g  ditempatkan  ke dalam cawan kurs dan dikeringkan dalam tanur pada suhu 500°C selama ±90 menit. Didinginkan Cawan kurs di dalam desikator  kemudian  diukur  selisih  bobot cawan  kosong  dan  bobot  cawan  berisi sampel (Fitria, 2013).
c.  Analisis bobot ekivalen
Sampel  sebanyak  1  g  ditempatkan  ke dalam erlenmeyer dan ditambahkan 5 mL etanol. Ditambahkan 1 g NaCl dalam 100 mL  aquades  dan  6  tetes  indikator  pp, kemudian dilakukan titrasi dengan larutan

## Mahardika et al.
NaOH 0,1 N sampai titik akhir titrasi (Fitria, 2013).
d.  Analisis kadar metoksil
Larutan NaOH 0,25 N sebanyak 25 mL ditambahkan  ke  dalam  larutan  ekstrak hasil penetapan bobot ekivalen, kemudian dihomogenkan.  Diamkan  larutan  dalam keadaan  tertutup  selama  30  menit  pada suhu  ruang,  ditambahkan  25  mL  larutan HCl 0,1 N dan 5 tetes indikator pp. Dititrasi dengan larutan NaOH 0,1 N sampai warna indikator berubah ke warna semula (Fitria, 2013).
e.  Analisis kadar asam galakturonat
Penetapan  kadar  asam  galakturonat dengan analisis kadar metoksil dan bobot ekivalen  (Fitria,  2013).  Pektin  sebanyak 0,5  g  ditetesi  5  mL  etanol  70%  yang selanjutnya dilarutkan ke dalam aquadest yang  berisi  1  g  NaCl.  Larutan  ditetesi fenoftalein  sebanyak  5  tetes  lalu  dititrasi dengan  NaOH  0,1  N  sampai  berubah warna.  Kemudian  larutan  hasil  titrasi ditambahkan  25  mL  NaOH  0,25  N, dikocok,  kemudian  didiamkan  selama  30 menit.  HCl  0,25  N  dan  5  tetes  fenoftalein kemudian  ditambahkan  ke  dalam  larutan tersebut, kemudian dititrasi dengan NaOH
0,1 N. Penetapan kadar asam galakturonat  dengan  cara  menjumlahkan
volume  pada  titrasi  pertama  (V1)  dan volume pada titrasi kedua (V2) dengan Mr galakturonat adalah 194 g/mol.
galakturonat= [ ( V1xV2 ) xNxMr berat pektin x100 ….(1) f.  Analisis derajat esterifikasi Penetapan derajat
esterifikasi ditentukan dari analisis kadar metoksil dan analisis  kadar  asam  anhidrogalakturonat (Fitria, 2013).
Derajat esterifikasi (%) = %metoksil Mr metoksil %AG
Mr AG x 100 ...(2)

## g.  Karakterisasi dengan FTIR
Penetapan  gugus  fungsi  sampel  diuji dengan  spektrofotometri  FTIR  Shimadzu 8400.

## Pembuatan cangkang kapsul
Dibuat cangkang kapsul campuran ekstrak rumput  laut  hijau  dan  kaktus  koboi  yang ditambahkan aquadest secara bertahap. Campuran  diaduk  kemudian  ditambahkan sorbitol  dan  Na-CMC,  larutan  dipanaskan selama  10-15  menit  pada  rentang  suhu  70ºC- 80ºC.  Proses  pemanasan  dihentikan  saat larutan  tersebut  telah  homogen.  Campuran homogen,  dituang  ke  dalam  loyang  dan dikeringkan  pada  suhu  ±40ºC  selama  8  jam. Selanjutnya dibentuk cangkang kapsul dengan bobot 300 mg. Cangkang kapsul dibuat dengan menggunakan formulasi seperti Tabel 1
Tabel 1 . Variasi formulasi cangkang kapsul Sampel Ekstrak Rumput Laut Hijau (%) Ekstrak Kaktus (%) Sorbitol (%) Na-CMC (%) Aquadest (%) A 0 4 1 2 93 B 1 3 1 2 93 C 2 2 1 2 93 D 3 1 1 2 93 E 4 0 1 2 93

## Mahardika et al.
Karakterisasi  dan  pengujian  cangkang kapsul
Hasil karakterisasi dan pengujian cangkang  kapsul  akan  dibandingkan  dengan Farmakope  Indonesia  edisi  VI  (Kementerian Kesehatan RI, 2020).
a.  Uji keseragaman bobot cangkang kapsul
Ditimbang 3 cangkang kapsul, kemudian dihitung rata-rata bobot cangkang  kapsul,  standar  deviasi  dan relatif standar deviasi.
b.  Uji waktu hancur
Dimasukkan  cangkang  kapsul  ke dalam  alat  uji  waktu  hancur  yang  berisi aquades t pada suhu 37 o C±1 o C, kemudian alat  uji  waktu  hancur  yang  berisi  sampel dinaik  turunkan  sampai  cangkang  kapsul hancur.  Dicatat  waktu  yang  dibutuhkan sampai cangkang kapsul hancur.
c.  Uji swelling
Ditimbang cangkang kapsul dan dicatat bobotnya.  Cangkang  kapsul  direndam dalam aquadest selama  1 jam kemudian dipisahkan  dari  pelarut  dan  ditimbang kembali (Karimah, 2016).
d.  Uji disolusi
Pembuatan larutan induk baku dengan cara  memasukkan  sebanyak  46,6  mg cefadroxil ke  dalam  labu  ukur  100  mL.
Dibuat  kurva  kalibrasi  dengan  cara memipet  1  mL,  2  mL,  3  mL,  4  mL,  5  mL dan  6  mL  kedalam  labu  ukur  100  mL. Diukur serapan pada panjang gelombang 320 nm dengan
menggunakan
spektrofotometer UV-Vis.
Diisi cangkang kapsul dengan 500 mg cefadroxil monohydrate, kemudian dimasukkan  ke  dalam  gelas  beaker yang berisi  larutan buffer sebanyak  25  mL
dengan  pH  2.  Diaduk  dengan  kecepatan
100  rpm  dalam  variasi  waktu 10,  20,  dan 30 menit. Diambil 10 mL larutan kemudian diuji  menggunakan  spektrofotometer  UV- Vis  pada  panjang  gelombang  320  nm (Karimah, 2016).

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Pektin  dari  Rumput  Laut  Hijau  dan  Kaktus Koboi
Pektin  hasil  dari  proses  ekstraksi  rumput laut  hijau  dan  kaktus  koboi  (Gambar  2) dianalisis  berdasarkan  parameter  kadar  air, kadar  abu,  bobot  ekivalen,  kadar  metoksil, kadar  asam  anhidrogalakturonat  dan  derajat esterifikasi.
a b
Gambar 2. Pektin (a) dari rumput laut (b) dari kaktus
Hasil  dari  karakterisasi  pektin  ekstrak rumput  laut  hijau  dan  kaktus  koboi  disajikan dalam Tabel 2.
Tabel 2. Karakteristik  pektin  ekstrak  rumput laut hijau dan kaktus koboi Karakterisasi Standar Mutu Hasil Ekstraksi Rumput Laut Hijau Kaktus Koboi Kadar Abu (%) Maks 10 1,00 1,00 Kadar Air (%) Maks 12 3,00 2,00 Bobot Ekuivalen(mg) 600-800 666,67 641,02 Kandungan Metoksil (%) > 7,12 9,30 8,68 Kadar Asam Galakturonat (%) Minimal 35 79,20 76,30 Derajat Esterifikasi Pektin (%) Minimal 50 66,67 65,11

## Mahardika et al.
Pengujian  bobot  pektin  bertujuan  untuk mengetahui  nilai  rendemen  pektin  yang dihasilkan  (Suparman et  al., 2019).  Bobot pektin  hasil  ekstraksi  rumput  laut  hijau  adalah 235  g  dari  sampel  awal  500  g  dan menghasilkan  nilai  rendemen  pektin  sebesar 47,0%  (w/w),  sedangkan  bobot  pektin  hasil ekstraksi kaktus koboi adalah 75 g dari sampel awal 222,6 g dan menghasilkan nilai rendemen pektin sebesar 33,7% (w/w). Bobot pektin hasil ekstraksi  rumput  laut  hijau  dan  kaktus  koboi yang  digunakan  sebanyak  40  g.  Bobot  pektin yang  diperoleh  lebih  tinggi  jika  dibandingkan dnegan  penelitian  sebelumnya  yakni  6  g, dengan  memanfaatkan  lidah  buaya  sebagai sumber  pektin  (Mahardika et  al., 2022). Meskipun memudahkan pengujian sifat fungsionalnya  namun  proses  pengeringan sampel  mengakibatkan  adanya  penurunan kemampuan bahan baku untuk membentuk gel sehingga  mengurangi  nilai  rendemen  ekstrak pektin yang dihasilkan.

## Kadar Air
Pada  penelitian  ini  didapatkan  kadar  air pada  rumput  laut  hijau  sebesar  3,0% sedangkan  kadar  air  pada  kaktus  koboi sebesar  2,0%.  Kadar  air  yang  diperoleh  lebih kecil dibandingkan dengan penelitian sebelumnya  yakni  pektin  dari  kulit  buah  kopi robusta sebesar 5,18% (Khairunisa et al., 2019) dan  pektin  dari  lidah  buaya  sebesar  5% (Mahardika et al., 2022). Hasil analisis kadar air pada  penelitian  ini  masih  termasuk  dalam pektin  yang  memenuhi  standar,  yakni  <  12% (Committee Food  Chemical  Codex , 2004).
Semakin  kecil  kadar  air,  maka  pektin  akan semakin baik.

## Kadar Abu
Pengabuan  sampel  menggunakan  tanur ±90 menit. Hasil analisis kadar abu pada pektin
dari  rumput  laut  hijau  dan  kaktus  koboi  yang diperoleh  sebesar  1%.  Kadar  abu  yang diperoleh  pada  penelitian  ini  lebih  kecil dibandingkan dua penelitian sebelumnya yang memanfaatkan  kulit  buah  biji  kopi  robusta, diperoleh kadar abu sebesar 3,03% (Khairunisa et  al., 2019)  dan  lidah  buaya  sebesar  2% (Mahardika et  al., 2022).  Semakin  kecil  kadar abu,  maka  pektin  yang  diperoleh  semakin murni. Hasil analisis kadar abu pada penelitian ini  masih  termasuk  dalam  pektin  yang memenuhi  standar  karena  <10%  (Antika  & Kurniawati, 2017)

## Bobot Ekivalen
Analisis  bobot ekivalen  dilakukan  dengan titrasi  sampai  terjadi  perubahan  warna.  Bobot ekivalen  adalah  ukuran  terhadap  kandungan gugus asam galakturonat yang tidak teresterifikasi  dalam  rantai  molekul  pektin. Besarnya  bobot  ekivalen  dipengaruhi  derajat esterifikasi  antara  asam  galakturonat  dan etanol.  Semakin  tinggi  derajat  esterifikasi antara asam galakturonat dan etanol mengakibatkan  semakin  rendahnya  jumlah asam galakturonat bebas yang berarti semakin tingginya berat ekivalen (Fitria, 2013).
Pada  pektin  dari  rumput  laut  hijau  terjadi perubahan  warna  dari  bening  kehijauan menjadi  warna  pink.  Sedangkan  pada  pektin dari kaktus koboi terjadi perubahan warna dari bening  kehijauan  menjadi  warna  pink.  Berat ekivalen  pektin  dari  rumput  laut  hijau  yang diperoleh sebesar 666,67 mg sedangkan berat ekivalen  pektin  dari  kaktus  koboi  sebesar 641,02 mg. Jika dibandingkan dengan penelitian  sebelumnya  yang  memanfaatkan lidah  buaya  sebagai  sumber  pektin,  bobot ekivalen  yang  diperoleh  tidak  jauh  berbeda yakni  636,942  mg (Mahardika et  al., 2022) .
Hasil analisis bobot ekivalen pada penelitian ini

## Mahardika et al.
masih termasuk dalam pektin  yang memenuhi standar,  karena  masih  masuk  dalam  rentang berkisar  antara  600-800  mg  yang  ditentukan oleh International Pectin Producers Association (IPPA) (2014).

## Kadar Metoksil
Analisis  kadar metoksil  dilakukan  dengan titrasi  sampai  terjadi  perubahan  warna.  Pada pektin dari rumput laut hijau terjadi perubahan warna  dari  bening  kehijauan  menjadi  warna pink. Sedangkan pada pektin dari kaktus koboi terjadi perubahan warna dari bening kehijauan menjadi warna pink.
Pektin dapat disebut bermetoksil tinggi jika memiliki nilai kadar metoksil sama dengan atau lebih  dari  7%  sedangkan  pektin  disebut bermetoksil  rendah  jika  memiliki  nilai  kadar metoksil  dibawah  7%.  Kadar  metoksil  pektin dari  rumput  laut  hijau  yang  diperoleh  sebesar 9,30%  sedangkan  kadar  metoksil  pektin  dari kaktus koboi sebesar 8,68%. Jika dibandingkan dengan penelitian sebelumnya  yang dilakukan oleh Amin & Alam (2020) dengan memanfaatkan  daun  cincau  hijau  diperoleh kadar  metoksil  sebesar  4,94%.  Dengan demikian  hasil  analisis  kadar  metoksil  pada penelitian  ini  termasuk  dalam  pektin  yang memiliki nilai metoksil tinggi.

## Kadar Asam Galakturonat
Analisis kadar asam galakturonat bertujuan  untuk  mengetahui  kemurnian  suatu pektin  terhadap  bahan  organik  netral  lainnya. Pada  penelitian  ini  didapatkan  kadar  asam galakturonat pada pektin dari rumput laut hijau sebesar  79,20%  sedangkan  kadar  asam galakturonat  pada  pektin  dari  kaktus  koboi sebesar  76,30%.  Kadar  asam  galakturonat yang  diperoleh  pada  penelitian  ini  lebih  tinggi jika dibandingkan dengan
penelitian
sebelumnya  yakni  57,62%  untuk  pektin  yang berasal dari biji buah kopi robusta (Khairunnisa et  al., 2019)  dan  32,80%  untuk  pektin  yang berasal dari daun cincau hujau (Amin & Alam, 2020).  Hasil  analisis  kadar  asam  galakturonat pada  penelitian  ini  masih  termasuk  dalam pektin yang memenuhi karena >35%
(International  Pectin  Producers  Association,
2014).
Kadar asam galakturonat berperan penting  dalam  penentuan  sifat  fungsional larutan pektin serta mempengaruhi struktur dan tekstur dari gel yang dihasilkan. Semakin tinggi kadar asam galakturonat, semakin murni pektin yang dihasilkan.

## Derajat Esterifikasi
Hasil derajat esterifikasi pektin dari rumput laut  hijau  yang  diperoleh  sebesar  66,67% sedangkan  nilai  derajat  esterifikasi  pektin  dari kaktus  koboi  sebesar  65,11%.  Hasil  ini  masih sedikit  lebih  tinggi  jika  dibandingkan  dengan derajat  esterifikasi  pektin  dari  biji  buah  kopi robusta  yaitu  sebesar  59,6%  (Khairunnisa et al., 2019), tetapi lebih rendah jika dibandingkan dengan  derajat  esterifikasi  pektin  dari  lidah buaya yaitu sebesar 79,26% (Mahardika et al.,
2022).  Derajat  esterifikasi  adalah  presentase jumlah  residu  asam  galakturonat  yang  gugus karboksilnya teresterifikasi dengan etanol. Nilai derajat esterifikasi diperoleh dari besarnya nilai kadar metoksil dan kadar asam galakturonat.
Pektin  ester  tinggi  memiliki  nilai  derajat esterifikasi  minimal  50%  dan  pektin  ester rendah  memiliki  nilai  maksimum  derajat esterifikasi  50% ( Antika  &  Kurniawati,  2017).
Dengan  demikian,  hasil  analisis  derajat esterifikasi pada penelitian ini termasuk dalam pektin yang memiliki nilai ester tinggi.

## Mahardika et al.

## Spektrum IR senyawa pektin
Analisis FTIR dilakukan pada pektin yang terbuat  dari  rumput  laut  hijau  dan  pektin  yang terbuat  dari  kaktus  koboi,  bertujuan  untuk
mengidentifikasi  gugus  fungsi  yang  terdapat dalam  pektin yang  dihasilkan.  Adapaun  hasil karakterisasi  dengan  FTIR  disajikan  pada Gambar 3.
(a)
(b)
Gambar 3 . Spektrum IR dari senyawa kektin (a) rumput laut dan (b) kaktus koboi
Hasil FTIR menunjukkan bahwa spektrum IR  pektin dari  rumput  laut  hijau  dan  kaktus.
Pada  bilangan  gelombang  3.444  cm -1 (rumput laut  hijau)  dan  3.333  cm -1 (kaktus  koboi) menunjukkan  adanya  gugus  O-H.  Pada bilangan  gelombang  2.900  cm -1 (rumput  laut hijau)  dan  2.935,76  cm -1 (kaktus  koboi) menunjukkan adanya gugus O=C-OCH 3 . Pada bilangan gelombang 1.637,62 cm -1 (rumput laut
hijau)  dan  1.702,90  cm -1 (kaktus  koboi) menunjukkan adanya gugus O=C=O.
Bilangan  gelombang ada  gugus-gugus tersebut  ditemukan  juga  pada  pektin  standar yang diuji oleh Yuniarti et al. (2014). Ditemukan bilangan gelombang 2930 cm -1 yang merupakan  ikatan  gugus –CH stretching CH 2 dan  CH 3 ,  pada  bilangan  gelombang  2974,79 cm -1 terdapat  gugus  -OH  karboksilat,  pada
Mahardika et al.
bilangan gelombang 3500 sampai 3200 cm -1 1 terdapat  ikatan  H  dari  O-H,  pada  bilangan gelombang 1640 sampai 1550 cm -1 terdapat N- H, pada bilangan gelombang 1640 sampai 670 cm -1 terdapat  C=O,  dan  pada  bilangan gelombang 3100 sampai 3500 cm -1 terdapat N – H (Yuniarti et al ., 2014).
Intensitas yang muncul pada setiap bahan baku berbeda-beda. Hal ini disebabkan karena perbedaan  bahan  baku  yang  digunakan sehingga gugus fungsi terbentuk memiliki nilai spektrum yang berbeda. Meskipun intensitasnya berbeda, adanya gugus O-H dan O=C-OCH 3 menandakan  karakteristik  pektin.
Spektrum  yang  mirip  dari  kedua  ekstrak  yang dianalisis  menandakan  pembentukan  pektin hanya melibatkan pencampuran fisika.
Tabel 3 .  Hasil  Cangkang  Kapsul  dari  Rumput Laut dan Kaktus Koboi
Sampel Cangkang Kapsul Gambar Kapsul A
B C D E

## Cangkang Kapsul
Cangkang  kapsul  dibuat  dengan  bobot sebesar  300  mg  dengan  variasi  formulasi cangkang  kapsul  yang  berbeda-beda  seperti tertera  pada  Tabel  3.  Hasil  yang  didapatkan dari  variasi  formulasi  cangkang  kapsul  yang mempengaruhi  sifat  fisik  cangkang  kapsul. Cangkang  kapsul  yang  paling  lunak  yaitu cangkang kapsul sampel B dengan perbandingan  rumput  laut  hijau  dan  kaktus sebesar 1:3, sedangkan cangkang kapsul yang paling keras dan kokoh yaitu cangkang kapsul sampel  D  dengan  perbandingan  rumput  laut hijau dan kaktus sebesar 3:1. Cangkang kapsul yang  dihasilkan  diisi  dengan  c efadroxyl monohydrate untuk diuji karakteristiknya.
Hasil Karakterisasi
dan
Pengujian

## Cangkang Kapsul
Cangkang  kapsul  non  gelatin  yang dihasilkan  kemudian  dikarakterisasi  sesuai dengan Farmakope Indonesia edisi VI (Kementerian Kesehatan RI, 2020).

## Keseragaman Bobot Cangkang Kapsul
Sebanyak  3  buah  cangkang  kapsul  dari masing-masing  sampel  dilakukan  pengujian keseragaman bobotnya dan hasilnya disajikan pada Tabel 4. Berdasarkan data pada Tabel 4 didapatkan  hasil  rata-rata  bobot  cangkang kapsul  pada  sampel  A  sebesar  307,2  mg, sampel B sebesar 311,6 mg, sampel C sebesar 309,7  mg,  sampel  D  sebesar  304,6  mg,  dan sampel E sebesar 308,7 mg. Cangkang kapsul yang terbuat dari rumput laut hijau dan kaktus koboi memiliki nilai relatif standar deviasi <2%, artinya  keseragaman  bobot  cangkang  kapsul yang dibuat telah memenuhi standar yang baik (Umami, 2020).
Mahardika et al.

## Tabel 4. Hasil  pengujian  keseragaman  bobot cangkang kapsul

## Waktu Hancur
Pengujian waktu hancur dilakukan dengan alat uji waktu hancur yang berisi aquades t pada suhu 37 o C±1 o C. Berdasarkan data pada Tabel
5,  kelima  sampel  cangkang  kapsul  memiliki waktu  hancur  tidak  lebih  dari  30  menit  (1800 detik).  Waktu  hancur  dari  ke-5  formulasi  lebih cepat  dibandingkan  dengan  penelitian  yang dilakukan  oleh  Suparman et  al. (2019),  yang memanfaatkan  pektin  dari  kulit  buah  cokelat, yang  memiliki  waktu  hancur  sebesar  1294 detik, tetapi relatif lebih lambat jika dibandingkan dengan waktu hancur dari pektin lidah buaya yaitu sebesar 504 detik (Mahardika et al., 2022).
Tabel 5. Hasil Pengujian Waktu Hancur
Sampel Cangkang Kapsul Waktu Hancur (detik) A 925 B 1000 C 870 D 1291 E 757
Sesuai  Farmakope  Indonesia  edisi  VI (Kementerian Kesehatan RI, 2020), spesifikasi syarat waktu uji hancur cangkang kapsul tidak lebih dari 30 menit (1800 detik).

## Derajat swelling
Hasil  uji swelling air  cangkang  kapsul disajikan pada Tabel 6.
Tabel 6. Hasil pengujian derajat swelling
Nilai swelling air  mempengaruhi  kekuatan mekanik  cangkang  kapsul  di  dalam  air. Semakin  besar  nilai swelling maka  semakin cepat waktu release obat, sedangkan semakin kecil  nilai swelling makan  kemampuan  obat untuk release semakin lambat.
Faktor  yang  mempengaruhi  nilai  derajat swelling yaitu  banyaknya  rongga  diantara ikatan polimer. Cangkang kapsul yang memiliki nilai derajat swelling paling besar yaitu sampel C,  dan  dapat  dikatakan  sampel  C  merupakan cangkang  kapsul  terbaik  berdasarkan  derajat swelling- nya. Namun tidak menutup kemungkinan  bagi  sampel  cangkang  kapsul formulasi  lain  untuk  dimanfaatkan  dalam aplikasi  sistem  penghantaran  obat sesuai kebutuhannya.

## Sifat disolusi
Pada  penelitian  ini  pengujian  disolusi, cangkang  kapsul  diisi  dengan  500  mg cefadroxyl  monohydrate. Pemilihan  pH  2 generalisasikan dengan pH lambung.
Pengadukan dilakukan dengan kecepatan 100 rpm dalam variasi waktu 10, 20, dan 30 menit.
Pengujian Cangkang Kapsul (mg) A B C D E 1 309,1 322,6 311,1 302,3 310,9 2 302,4 310,2 309,3 303,7 308,3 3 310,1 302,1 308,6 307,9 306,8 Rata-rata 307,2 311,6 309,7 304,6 308,7 Standar Deviasi 4,2 5,5 1,3 2,9 2,1 Relatif Standar Deviasi 1,4 1,8 0,4 1,0 0,7 Sampel Massa Sebelum Menyerap Air (g) Massa Sesudah Menyerap Air (g) Derajat Swelling (%) A 0,3 1,1 266,7 B 0,3 0,9 200,0 C 0,3 2,3 666,7 D 0,3 1,0 233,3 E 0,3 0,8 166,7

## Mahardika et al.
Pengujian  dengan  spektrofotometer  UV-Vis pada  panjang  gelombang  320  nm.  Pada literatur,  uji  disolusi  dengan  spektrofotometer UV-Vis  untuk  cangkang  kapsul  menggunakan panjang gelombang 263 nm.
Uji disolusi dimaksudkan untuk mengetahui  seberapa  banyak  presentasi  zat aktif  dalam  obat  yang  terabsorpsi  dan  masuk kedalam  peredaran  darah  untuk  memberikan efek terapi. Uji disolusi dapat digunakan untuk memastikan kualitas dan sifat- sifat produk obat dengan perubahan minor dalam formulasi atau pembuatan setelah izin pemasaran. Data hasil uji disolusi dapat dilihat pada Tabel 7.
Berdasarkan Tabel 7, dapat dilihat bahwa pengurangan  cangkang  kapsul  selama  30 menit  kurang  dari  10%.  Maka  hasil  ini  sesuai dengan Farmakope Indonesia edisi VI
(Kementerian Kesehatan RI, 2020).
Tabel 7 .  Hasil  pengujian  disolusi  cangkang
kapsul Waktu Sampling Cangkang Kapsul (mg) A B C D E 10 menit 0,94 1,27 0,22 2,02 0,22 20 menit 1,44 2,36 0,35 2,19 0,39 30 menit 2,53 3,49 0,72 2,44 0,72 Jumlah 4,89 7,11 1,29 6,65 1,33 Total Pengama tan 3 3 3 3 3 Rata-rata 1,63 2,37 0,43 2,22 0,45

## KESIMPULAN
Analisis  kelayakan  material  cangkang kapsul dilakukan berdasarkan bebrapa parameter. Mengacu pada International Pectin Producers  Association ,  kadar  abu,  bobot ekivalen, kadar metoksil, kadar asam galakturonat dan keseragaman bobot cangkang  kapsul  telah  memenuhi  standar. Hasil  karakterisasi  cangkang  kapsul  dengan
FTIR menunjukan adanya kemiripan spektrum serapan dengan pektin standar. Waktu hancur kapsul < 30 menit dan hasil disolusi kurang dari 10% selama 30 menit. Cangkang kapsul  yang terbuat dari perpaduan rumput laut dan kaktus dapat  digunakan  sebagai  material  dalam sistem penghantaran obat .

## UCAPAN TERIMAKASIH
Terimakasih kepada Sekolah Tinggi Analis Kimia Cilegon untuk tempat laboratorium guna melaksanakan  penelitian  dan  juga  Universitas Pendidikan  Indonesia  yang  telah  mengizinkan melakukan karakterisasi FTIR.

## DAFTAR PUSTAKA
Antika, S. R., dan Kurniawati, P. (2017). Isolasi dan Karakterisasi Pektin dari Kulit Nanas. Prosiding Seminar Nasional Kimia FMIPA UNESA . 7 Oktober 2017, Surabaya.
Amin, F., dan  Alam, DN. (2020). Karakterisasi dan  Pembuatan  Cangkang  Kapsul  Keras dari  Ekstrak  Daun  Cincau  Hijau  ( Premna oblongifolia Merr). Jurnal  ITEKIMIA .  8(2), 30-41.
Fitria,  Vita.  (2013).  Karakterisasi  Pektin  Hasil Ekstraksi dari Limbah Kulit Pisang Kepok ( Musa  balbisiana ABB).  [ Skripsi ]. UIN Syarif Hidayatullah, Jakarta.
International  Pectin  Producers  Association (IPPA). (2014). Pectin Commercial Production  and  Pectin  in  Organic  Food Products , https://ippa.info
Kementerian Kesehatan RI. (2020). Farmakope Indonesia edisi VI . Departemen Kesehatan Republik Indonesia, Jakarta.
Committee on Food Chemicals Codex. (2004).
Food  Chemicals  Codex: Food  and Nutrition  Board,  5th  Edition .  The  National Academies Press, Washington, D. C.
Harianto,  T.,  dan  Peranginangin,  R.  (2008).
Studi  Teknik  Pengeringan  Gelatin  Ikan dengan  Alat  Pengering  Kabinet. Jurnal Pascapanen dan Bioteknologi Kelautan dan Perikanan . 3(1), 89-96.
Mahardika et al.
Karimah, M. (2016). Pembuatan dan
Karakterisasi  Kapsul  Pati-Alginat  dari Ekstraksi Rumput Laut Coklat ( Sargassum sp .) sebagai Material Drug Delivery  System .  [ Skripsi ].  Universitas Airlangga, Surabaya.
Khairunnisa,  SS.,  Herawati,  D.,  Miftah  AM.
(2019).  Karakterisasi  Pektin  dari  Kulit Buah  Kopi  Robusta  ( Coffea  canephora Pierre ex A. Froehner ) dalam Pembuatan Cangkang
Kapsul Keras. Prosiding
Farmasi Unisba, 5(2), 781-788
Mahardika,  M.,  Amin,  F.,  Umami,  I.  A., Situmeang,  B.,  dan  Ibrahim,  A.  M.  2021. Synthesis and Characterization of Capsule Shell  Non  Gelatin  Grass  Jelly  Leaves- Seawed as Drug Delivery System Material.
Jurnal Pendidikan Kimia, 13(1), 1-9.
Mahardika, M.,  Dariyat.,  Susparini,  NT.,  Amin,
F.  (2022).  Sisntesis  dan  Karakterisasi
Cangkang  Kapsul  Non-Gelatin  dari  Lidah Buaya  ( Aloe  vera L) – Karagenan. Jurnal
Medika & Sains, 2(2): 76-88
Sativa, O., Yuliet., dan Sulastri, Evi. (2014). Uji Aktivitas  Antiinflamasi  Gel  Ekstrak  Buah Kaktus  ( Opuntia  elatior  Mill .)  pada  Tikus ( Rattus  norvegicus L)  Yang  Diinduksi Lamda  Karagenan. Online  Jurnal  of
Natural Science , 3(2), 79-94.
Hermanto,  S.,  Saputra,  FR.,  Zilhadia.  (2015). Aplikasi  Metode  SDS-Page  (Sodium
Dodecyl Sulphate Poly Acrylamyde  Gel  Electrophoresys)  untuk Mengidentifikasi Sumber Gelatin
pada Kapsul Keras. Jurnal Kimia Valensi,
1(1), 26-32.
Shargel, L., Wu-pong, S., dan Yu A.B. (2007). Applied
Biopharmaceutics
&
Pharmacokinetics  5 th Edition .  McGraw- Hill, New York.
Suparman,  A.,  Herawati,  D.,  Zahra,  F.  T.
(2019). Karakterisasi dan Formulasi Cangkang Kapsul dari Tepung Pektin Kulit
Buah Cokelat . Jurnal Imiah Farmasi , 2(2). 77-83
Utama,  A.S.,  dan  Riyupi,  U.  (2017).  Sintesis dan  Karakterisasi  Kitosan-ko-N  Isopropil Akrilamida Hasil Radiasi- ɤ  Sebagai Hidrogel  Thermo-  dan  pH-sensitif  untuk
Sistem Penghantaran Obat yang
Terkontrol.  [ Skripsi ].  Universitas  Sultan Ageng Tirtayasa, Cilegon.
Yuniarti, L. I., Hutomo, G. S., Rahim, A. (2014). Sintesis  dan  Karakterisasi  Bioplastik Berbasis Pati Sagu ( Metroxylon Sp. ). e-J. Agrotekbis, 2(1): 38-46.