## MIKROBA PARAMETER KUALITAS PERAIRAN P. PARI UNTUK UPAYA PEMBESARAN BIOTA BUDIDAYA

## MICROBES PARAMETERS OF WATER QUALITY FOR AQUACULTURE ON PARI ISLAND WATERS
Lies Indah Sutiknowati
Pusat Penelitian Oseanografi, LIPI, Jl. Pasir Putih I, Ancol Timur, Jakarta Utara; Email: lies_indah@yahoo.com.sg

## ABSTRACT
The objective of this research was to evaluate waters quality in Pari island waters for aquaculture purpose  based on bacteriological information  conducted  in  Mei  and  September 2011. Microbiological  parameters  analyzed were  total  density of  bacteria for coliforms,  E.coli, pathogenic, heterotrophic, halotoleran, phosphate-nitrate-ammonia breaker, and total cells. Method to analyze coliform bacteria was filtration, identification of pathogenic bacteria using biochemical test,  density analises for heterotrophic bacteria, analises for phosphate-nitrate-ammonia  breaker bacteria using pour plate, and total cell using Acridine Orange Epifluorescence Microscopy. Results showed that the abundance of total coliform cell was about 1000-7000 colony forming unit (cfu)/100 ml. The abundance of heterotrophic, halotolerant, phosphate-nitrate-ammonia bacteria in seawater was (3.6-4.3)x10 5 cfu/ml, (1.1-1.3)x10 5 cfu/ml, (0.5-3.44)x10 3 cfu/ml; and (3.6-6.7)x10 5 cfu/ml, (1.6- 2.7)x10 5 cfu/ml, (0.6-5.22)x10 3 cfu/ml in sediment, respectively. The total cell of bacteria was (0.05- 2.1)x10 7 cells/ml.  The dog-conch (Strombus turturella) and blood-clamps (Anadara  granosa) can survive in Pari Island and there was a significant increase in sea grass litter with growth average of 0.67 mm/day and 0.90 mm/day. During snails and clamps growth, there were found several genus of pathogenic bacteria such  as  Salmonella , Vibrio , Aeromonas , Pseudomonas , Citrobacter , Proteus , Shigella , Hafnia, and  Yersinia . The results showed  that  Pari island waters was suitable for developing shellfish aquaculture dog conch and blood clamps.
Keywords: bacteria, parameter, shellfish, aquaculture.

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kualitas perairan laut P. Pari yang akan digunakan untuk kepentingan budidaya perikanan  ditinjau dari aspek mikrobiologisnya. Penelitian  dilakukan pada bulan Mei  dan  September 2011.  Parameter mikrobiologis yang dianalisa adalah kepadatan total bakteri koli, E.coli , patogen, heterotrofik, halotoleran, pemecah fosfat-nitrat-amonia dan total sel. Analisis total bakteri koli menggunakan metode filtrasi, identifikasi bakteri patogen berdasarkan uji biokimia,  analisis kepadatan bakteri heterotrofik, halotoleran dan bakteri pemecah fosfat-nitrat- amonia menggunakan metode  tuang, analisis total sel menggunakan Acridine Orange Epifluorescence Microscopy. Hasil yang diperoleh adalah  kepadatan  total  bakteri  koliform  sebesar 1000-7000  unit pembentukan koloni (upk)/100ml.  Kepadatan bakteri heterotrofik, halotoleran, pemecah fosfat-nitrat-amonia di perairan berkisar antara (3.6-4.3)x10 5 upk/ml, (1.1-1.3)x10 5 upk/ml,
(0.5-3.44)x10 3 , dan di sedimen berkisar  antara  (3.6-6.7)x10 5 upk/ml, (1.6-2.7)x10 5 upk/ml, (0.6- 5.22)x10 3 upk/ml  dan  total sel bakteri  sebesar  (0.05-2.1)x10 7 sel/ml.  Siput gonggong (S trombus turturella ) dan kerang darah ( Anadara granosa ) dapat hidup dan pertumbuhannya signifikan dengan memanfaatkan serasah dan substrat  di padang lamun  dan  pertumbuhan cangkangnya  rata-rata mencapai  0.67  mm/hari  dan  0.90 mm/hari.  Selama  pertumbuhan  siput  dan kerang terdapat bakteri patogen dengan beberapa marga seperti Salmonella, Vibrio , A eromonas, Citrobacter, Pseudomonas, Proteus, Hafnia, Yersinia dan Shigella. Hasil penelitian menunjukkan bahwa perairan P. Pari dapat digunakan untuk budidaya siput gonggong dan kerang darah.
Kata kunci: bakteri, parameter, kekerangan, budidaya.

## I.  PENDAHULUAN
Salah satu parameter penunjang keberhasilan budidaya adalah kondisi bakteriologis di dalam perairan (Sutiknowati  dan  Ruyitno, 2008).  Bakteri yang lazim diamati sebagai parameter penilaian kualitas perairan adalah kelompok bakteri koli, heterotrofik dan bakteri patogen. Dalam penilaian kualitas perairan, semakin banyak jumlah bakteri koli dan bakteri patogen yang terdapat pada  perairan  budidaya  maka  dapat menyebabkan kematian benih secara massal dan turunnya kualitas paska panen. Pseudomonas dan Aeromonas dapat menyebabkan kematian larva rajungan ( Portunus pelagicus) maupun yang lainnya yaitu C allinectes sapidus , namun hal ini dapat dihindari dengan metode air mengalir dan pemberian desinfektan (Juwana, 2000; Zmora et al., 2005).
Bakteri patogen atau non patogen umumnya dapat ditemukan pada tubuh biota laut. Bakteri patogen yang biasa ditemukan antara lain Salmonella, Vibrio, Aeromonas, Proteus, Citrobacter dan bakteri patogen dapat hidup pada organ luar maupun dalam biota (WHO, 1982). Pada beberapa penelitian yang telah dilakukan di beberapa negara, ditemukan parasit dan mikroba patogen pada organ luar dan dalam  biota laut, salah satunya adalah penelitian di Amerika Serikat yang menemukan kontaminasi patogen pada sedimen dan biota perairan (Bitton and Harvey, 1993).
Bakteri non patogen umumnya termasuk dalam kelompok bakteri heterotrofik.  Bakteri heterotrofik pada suatu perairan menjadi salah satu indikator aktifitas penguraian senyawa organik yang menunjukkan kesuburan perairan dan berkaitan dengan pakan alami bagi biota laut. Bakteri heterotrofik di lingkungan laut berperan sangat vital sebagai dekomposer yang menguraikan material organik menjadi komponen  yang lebih
sederhana sebagai unsur hara yang esensial (Aksornkoe, 1993). Beberapa jenis bakteri heterotrofik antara lain Pseudomonas, Micrococcus, Sarcina, Staphylococcus dan Flavobacterium.
Pulau Pari  merupakan bagian dari Kepulauan Seribu  yang terdiri dari 105 gugus pulau terbentang vertikal dari Teluk Jakarta hingga ke utara yang berujung di Pulau  Sebira yang berjarak kurang lebih 150 km dari pantai Jakarta Utara. Pulau
Pari dengan  luas daratan sekitar 897,71 Ha, memiliki luas perairan sekitar 6.997,50 km 2 .  Kondisi perairan di Kepulauan Seribu mengikuti kondisi umum perairan Indonesia yang di pengaruhi oleh monsun barat atau monsun timur dan musim peralihan (Mardesyawati dan Timotius, 2010).
Penduduk P. Pari umumnya memanfaatkan perairannya untuk budidaya  rumput laut dan ikan seperti kerapu dan kakap merah sebagai mata pencaharian dan mencukupi kebutuhan gizinya.Alternatif budidaya biota laut di perairan P. Pari adalah kekerangan  siput gonggong dan kerang darah yang merupakan biota laut penting dalam sektor perikanan serta mempunyai nilai ekonomis tinggi.  Siput gonggong dan kerang darah merupakan kekerangan yang potensial dan sebarannya hampir ditemukan di seluruh  perairan pesisir pantai (Dody dan  Marasabessy,  2007; Baqueiro et al ., 2000; Stern and  Wolff, 2006).
Sementara itu, penurunan kualitas perairan  terus terjadi dan perlu  mendapat perhatian, terlebih lagi adanya berbagai jenis mikroba di dalam perairan. Pengetahuan mengenai mikroba yang menunjang keberhasilan budidaya masih sangat kurang,  oleh karenanya  tulisan ini bertujuan untuk mengukur  kualitas air berdasar  parameter mikroba  terhadap kegiatan budidaya di perairan P.Pari.

## II. METODE PENELITIAN

## 2.1. Lokasi dan Waktu Penelitian
Penelitian dilakukan diperairan P. Pari  dengan  menetapkan beberapa stasiun pengamatan  pada  posisi geografis  antara 106 o 36’579” BT dan 5 o 51’777” LS (Gambar 1). Lokasi  penelitian ini berada pada ekosistem lamun tempat pembesaran kekerangan siput gonggong dan kerang darah.  Pembesaran  selama 7 bulan
dilakukan dalam keramba  “pen-culture” yang  berfungsi untuk melokalisir area sehingga kekerangan terhindar dari predatori dan hewan peliharaan tetap terkumpul  (Gambar 2).  Pengambilan sampel  untuk bakteri dilakukan dengan waktu yang berbeda yaitu bulan Mei (trip I) saat musim peralihan I (musim hujan ke musim panas) dan September (trip II) saat musim peralihan II (musim panas ke musim hujan) tahun 2011.
Gambar 1.  Lokasi penelitian di pulau Pari, kepulauan Seribu, Jakarta Utara.
Gambar 2. Keramba tancap untuk memelihara kekerangan siput gonggong dan kerang darah di perairan P. Pari, pada ekosistem lamun (Padang Lamun).
Perairan Pulau Pari dipengaruhi oleh arus pasang surut yang cukup dominan dengan substrat dasar terdiri dari pasir kasar, pasir halus hingga lumpur berpasir. Selain itu di daerah pesisir perairan ini ditumbuhi mangrove yang jarang serta lamun yang cukup padat. Jenis lamun yang tumbuh di perairan ini didominasi oleh Enhalus acoroides . Kondisi tinggi permukaan air saat surut terendah lebih kurang 30 cm.  Tabel 1 menunjukkan pengambilan (koleksi) sampel berupa air laut dan sedimen yang
dilakukan di sekitar P. Pari, yaitu P. Tidung, P. Tikus, P. Kongsi, P. Burung, P. Tengah, P. Pari, ekosistem lamun, keramba budidaya kekerangan, dan pada biota kekerangan (siput gonggong dan kerang darah). Kondisi hidrologi perairan, yaitu suhu rata-rata sebesar 28 o C, salinitas rata-rata sebesar 30.5, dan pH rata-rata sebesar 5.6. Sampel air, sedimen dan biota siput gonggong dan kerang darah diambil pada saat tinggi air (kedalaman) sekitar 2
m.
Tabel 1. Koleksi sampel untuk pengamatan jenis bakteri.
Lokasi sampling Jenis bakteri dan waktu sampling No. Total koliform Trip Heterotrofik, Halotoleran, pemecah fosfat- nitrat- amonia Trip Patogen Trip 1 P. Tidung air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 2 P. Tikus air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 3 P. Kongsi air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 4 P. Burung air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 5 P. Tengah air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 6 P. Pari air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 8 St. lamun air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 9 St. keramba air I, II air, sedimen I, II air, sedimen I, II 10  Siput gonggong - - - - daging I, II 11  Kerang darah - - - - daging I, II
2.2.  Analisa Total Bakteri Koli
Analisa total bakteri koli dilakukan dengan metode Filtrasi (WHO, 1982; EPA, 1986). Contoh air diambil dengan botol sampel 200mL, sebanyak 1 mL & 5 mL disaring dengan menggunakan filter selulosa nitrat (porositas 0,45 μ m dan diameter 47 mm). Membran filter kemudian diletakkan dalam cawan petri berupa compact dry yang berisi media dan diinkubasikan dalam inkubator dengan suhu 35 o C selama 24 jam. Koloni yang tumbuh berwarna ungu (koliform) dan biru ( E.coli ) dihitung dan dikonversikan ke dalam konsentrasi bakteri per 100 mL.

## 2.3. Isolasi Bakteri Patogen
Isolasi bakteri patogen genus Vibrio dan Salmonella didasarkan pada metode Barrow and  Miller (1976). Isolasi bakteri genus Vibrio menggunakan media TCBS (Thiosulfate Citrate Bile Salt Sucrose Agar) secara aseptis dan diinkubasikan pada inkubator dengan suhu 35 o C selama 24 jam. Bakteri yang tumbuh selanjutnya diuji pada beberapa media uji TSI, LDB, MR-VP dan NaCL. Isolasi bakteri patogen genus Salmonella menggunakan media enrichment, media selenit dan media XLD agar, selanjutnya diinkubasikan ke dalam inkubator selama 24 jam pada suhu 35 o C. Bakteri yang tumbuh pada media XLD agar selanjutnya diuji pada media uji TSI, SIM, LDB, Sulfit, dan Urea.
2.4.  Isolasi Bakteri Heterotrofik Populasi bakteri heterotrofik dianalisa dengan metode pour plate dengan pengenceran hingga 10 -4 menggunakan buffer phosphate yang ditanam ke dalam media marine agar (AL) dan media modified marine agar (AT) sebanyak 1 mL. Sampel diinkubasikan pada suhu ruang, selama 7 hari. Setelah 7 hari, koloni yang tumbuh dihitung dengan jumlah koloni antara 30- 300 upk. Jumlah  koloni diantara kisaran
tersebut kemudian diolah menurut perhitungan Hadioetomo (1993).

## 2.5.  Isolasi Bakteri Fosfat, Nitrat dan Amonia
Distribusi dan populasi bakteri fosfat, nitrat dan amonia dianalisa dengan menanam sampel yang telah diencerkan (dalam buffer phosphate ) ke dalam media Pivoskaya dan media modified nitrat- ammonia .  Sampel yang ditanam pada media berasal dari pengenceran 10 -1 sampai 10 -2 sebanyak 1 mL. Masing- masing sampel diulang sebanyak 2 kali, ditanam dengan metode pour plate dengan menggunakan kurang lebih 20 mL masing-masing media pada cawan petri steril. Sampel diinkubasikan pada inkubator dengan suhu ruang, selama 7 hari. Setelah 7 hari, koloni yang tumbuh dihitung dengan jumlah koloni antara 30- 300 upk. Jumlah koloni diantara kisaran tersebut kemudian diolah menurut perhitungan Hadiutomo (1993). Nilai yang diperoleh merupakan jumlah koloni bakteri dalam suatu sampel.

## 2.6. Menghitung Total Sel
Untuk menentukan jumlah bakteri yang ada di dalam suatu medium dapat digunakan cara menjumlahkan bakteri secara keseluruhan ( total cell counts ) yaitu dengan menghitung semua bakteri yang ada di dalam suatu medium biakan, baik yang hidup maupun yang mati (Lay, 1994). Perhitungan total sel ( total cell count ) dengan metode AODC ( Acridine Orange Direct Count ) adalah salah satu metode perhitungan bakteri secara langsung menggunakan cat fluorokrom acridine orange ( 3,6-tetrametyl diaminoacridine ) dengan teknik mikroskop epifluoroscence. Sampel ditambahkan ke dalam 2,29 ml larutan pewarna acridine orange sehingga diperoleh pengenceran  10 -1 dan disimpan pada suhu 4°C (Mitra  and  Takahata, 2008). Selanjutnya disiapkan alat saring
yang terdiri dari filter membran polikarbonat milipore berdiameter 25 mm, berpori-pori 0,2 µ m  dan dihubungkan pada vacuum pump EYELA Type A- 10005.

## 2.7. Parameter Kondisi Lingkungan
Untuk mengetahui kondisi lingkungan perairan P. Pari sebagai sumber air laut untuk budidaya dilakukan pengukuran suhu dan salinitas, suhu diukur dengan menggunakan ‘HORIBA’ sedangkan pengukuran salinitas menggunakan refraktometer. Seluruh parameter tersebut diukur secara langsung di lapangan ( in situ ).

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1.  Hasil Analisis Total Bakteri Koliform
Sebaran kepadatan bakteri total bakteri  koliform di perairan  P.  Pari dan sekitarnya  pada bulan Mei (trip I) dan September (trip II) tahun 2011 menunjukkan  kisaran  sekitar  3000-4000 koloni/100ml  (Gambar 3).  Pada  perairan keramba dan lamun tempat  pemeliharaan pertumbuhan siput gonggong dan kerang darah  terdapat  total  bakteri  koliform dengan kepadatan sangat tinggi yaitu 7000 koloni/100 ml.
Pada seluruh lokasi sampling ditemukan bakteri E.coli ( E.coli I)  yang termasuk  golongan koliform dengan konsentrasi tinggi (pada bulan Mei, trip I) yaitu sekitar 375-825 koloni/100ml dan ( E.coli II) dengan konsentrasi  rendah (pada bulan September, trip II) yaitu sekitar 10-42 koloni/100ml. Bakteri E.coli merupakan salah satu jenis bakteri koliform yang banyak ditemukan dan terdapat diperairan. Menurut EPA (1986), kelayakan perairan yang  bisa digunakan adalah  apabila konsentrasi total koliform tidak lebih dari  200  koloni/100 ml  dan E.coli sebesar 126 koloni/100 ml. Adanya kepadatan bakteri koliform dan E.coli yang tinggi adalah akibat dari kegiatan domestik di P. Pari dan pulau-pulau sekitarnya yang masuk ke perairan dan mencemari sumber air yang digunakan untuk tambak budidaya. Pada bulan September (trip II) saat musim hujan dimulai, perairan sekitar P. Pari dan keramba penelitian ditemukan bakteri E.coli dengan konsentrasi sangat rendah. Keberadaan bakteri koliform dan E.coli kemungkinan bisa dihilangkan dengan perlakuan sterilisasi (sinar UV) dan pemberian desinfektan yang diperbesar konsentrasinya (Juwana, 2000) atau adanya perlakuan air mengalir dengan air yang sudah disimpan selama 24 jam lebih.
Gambar 3. Jumlah koloni total bakteri koliform dan E.coli per 100 ml di perairan P. Pari dan sekitarnya pada bulan Mei (musim peralihan I) dan September (musim peralihan II) tahun 2011.
11 10 42 22 14 0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000 sekitar p.pari air keramba siput
gonggong kerang darah lamun
ko lo ni /100m l Lokasi Sampling koliform (I) koliform (II) E.coli (I) E.coli (II)
Bakteri tersebut dapat menyebabkan terhambatnya pertumbuhan biota yang di budidayakan atau bahkan menyebabkan penyakit pada manusia yang mengkonsumsi biota yang dibudidayakan (Girard et al ., 2005).
Dibandingkan dengan penelitian di perairan Belitung Barat  (Sutiknowati, 2011),  kepadatan total bakteri koliform dan E. coli diperairan sekitar P. Pari masih relatif lebih rendah. Adanya total bakteri koliform dan E.coli yang tinggi adalah akibat dari limbah domestik yang masuk ke perairan  (Suhendar  dan  Heru, 2007) dan  bakteri  tersebut masuk ke perairan laut melalui aliran sungai. Keberadaan bakteri ini lebih banyak di perairan sekitar keramba dan padang lamun dimungkinkan karena limbah terperangkap didalamnya.

## 3.2.  Hasil  Analisis Bakteri  Heterotrofik dan Halotoleran
Kepadatan bakteri heterotrofik dan halotoleran ditunjukkan pada Gambar 4. Bakteri heterotrofik di perairan P. Pari dan sekitarnya  sebesar  (3.6-4.3)x10 5 upk/ml (Gambar  4),  dan  kepadatan bakteri halotoleran diperairan sebesar (1.1- 1.3)x10 5 upk/ml. Kepadatan populasi
bakteri heterotrofik dari sampel sedimen sebesar (3.6-6.7)x10 5 upk/ml dan kepada- tan bakteri halotoleran di sedimen sebesar (1.6-2.7)x10 5 upk/ml.
Konsentrasi kepadatan bakteri heterotrofik dan halotoleran tinggi di perairan P. Pari, kondisi ini diduga karena adanya padang lamun yang merupakan salah satu ekosistem bahari paling produktif yang mempunyai produktivitas tinggi dan menopang sumberdaya yang tinggi pula. Padang lamun mempunyai fungsi ekologis sebagai produsen primer, pendaur ulang unsur hara, penstabil substrat dan penangkap sedimen, sebagai habitat dan makanan serta tempat berlindung bagi organisme laut lainnya, dan sebagai substrat bagi perifiton sehingga menyumbang banyak senyawa organik yang merupakan sumber karbon bagi bakteri heterotrofik  (Azkab, 2000). Pada penelitian di P. Pari ini, ditemukan luasan lamun sebesar 18.17-21.33% dengan kerapatan sebesar 63.2-71.6 tunas/m 2 .  Biomassa  lamun di P.  Pari adalah sebesar 561-1269.944  gr.BK/m 2 , lebih tinggi dari biomassa  lamun yang ditemukan tahun 2010 yaitu sebesar 423.27-948.36 gr.brt. krg./m 2 .
Gambar 4.  Kepadatan  bakteri  heterotrofik dan  halotoleran (upk/ml) di perairan P. Pari dan sekitarnya pada bulan Mei (musim peralihan I) dan September (musim peralihan II) tahun 2011.
0 100000 200000 300000 400000 500000 600000 700000 800000 sekitar p.pari air keramba sedimen lamun up k/ ml Lokasi Sampling heterotrofik (I) heterotrofik (II) halotoleran (I) halotoleran (II)
Kepadatan populasi bakteri heterotrofik dan halotoleran pada air laut lebih rendah dibanding populasi bakteri heterotrofik di sedimen. Hal ini kemungkinan disebabkan adanya senyawa organik yang terlepas dari sedimen berupa lumpur di perairan laut sehingga di sedimen lebih tinggi yang diurai oleh bakteri heterotrofik. Adanya bakteri halotoleran di perairan, lebih rendah kepadatannya dibanding bakteri heterotrofik dan populasi kedua bakteri sangat mencolok perbedaan kepadatannya di sedimen. Keberadaan bakteri halotoleran menunjukkan adanya bahan organik berasal dari daratan yang masuk kedalam perairan laut, dan populasi bakteri ini umumnya lebih rendah dari bakteri heterotrofik. Kepadatan bakteri halotoleran yang lebih rendah menunjukkan bahwa aktifitas di daratan tidak mempengaruhi perairan laut dan unsur organik yang berasal dari laut sangat tinggi.

## 3.3.  Hasil  Analisis Bakteri Pemecah Fosfat-Nitrat-Amonia
Penghitungan
konsentrasi
(kelimpahan) bakteri pemecah fosfat pada
semua lokasi sampling menunjukkan nilai berkisar antara (0.3-0.9)x10 3 upk/ml  pada bulan Mei (trip I) dan Sept (trip II), lebih kecil dibanding nilai kelimpahan bakteri pemecah nitrat dan ammonia (Gambar 5). Konsentrasi bakteri pemecah fosfat-nitrat- amonia  di  perairan P. Pari dan sekitar keramba lebih kecil dibanding yang ada di sedimen. Kelimpahan bakteri di sedimen menunjukkan nilai yang tinggi  berkisar antara (0.9-5.22)x10 3 upk/ml. Konsentrasi bakteri di perairan  dan di sedimen baik aerob maupun anaerob akan  meningkat selama masa pemeliharaan biota budidaya, namun konsentrasi bakteri tersebut akan menurun menjelang sisa pakan habis terurai oleh bakteri  (Rao, 1994).  Materi organik yang berasal dari sisa pakan  dan membusuk, kaya akan sumber-sumber P organik,  dan  unsur P tersebut dapat diserap oleh tanaman dalam bentuk tersedia. Oleh sebab itu, peranan bakteri sangat penting dalam peristiwa dekomposisi dalam menguraikan senyawa fosfat yang terkandung dalam sedimen menjadi P anorganik tersedia yang dibutuhkan (Cotner et al ., 2000).
Gambar 5.  Kepadatan  bakteri  heterotrofik, halotoleran dan pemecah fosfat-nitrat- amonia (upk/ml) di perairan P. Pari dan sekitarnya pada bulan Mei (musim peralihan I) dan September (musim peralihan II) tahun 2011.
0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 sekitar p.pari air keramba sedimen lamun up k/ ml Lokasi Sampling fosfat (I) fosfat (II) nitrat (I) nitrat (II) amonia (I) amonia (II)
Konsentrasi bakteri pemecah fosfat, nitrat dan amonia  ditemukan bervariasi  pada  lokasi sampling di perairan P. Pari dan sekitarnya dan  yang terdapat di sedimen.  Bakteri heterotrofik, halotoleran dan bakteri pemecah fosfat, nitrat, dan ammonia di laut berperan dalam rantai makanan sebagai pendegradasi bahan organik menjadi bahan anorganik yang berupa nutrisi yang akan dimanfaatkan oleh biota lain yaitu fitoplankton, dan merupakan piramida dasar dari sistem rantai makanan, sehingga kehidupan laut menjadi lestari. Bakteri heterotrofik digunakan sebagai salah satu indikator kesuburan suatu perairan karena kemampuanmya menguraikan senyawa organic  (Aisyah dan Hartono, 2004).  Bakteri heterotrofik mempunyai hubungan simbiosis dengan fitoplankton pada kehidupan laut dan disebut sebagai algaecidal bacteria .
Hubungan simbiosis terjalin dengan adanya perjalanan nutrien yang dibawa oleh sungai ke laut dan dimanfaatkan oleh fitoplankton terutama diatomae. Namun diatomae saling bersaing dengan dinoflagellata untuk mendapatkan nutrien (Suminto and Hirayama, 1993). Menurut pemikiran para ahli plankton, dinoflagellata berasosiasi dengan bakteri yang dapat mengakibatkan dinoflagellata menjadi single species
bloom pada fenomena red tide (Praseno, 2000). Menurut Lignell (1992), bakteri yang hidup dari serasah akan mengeluarkan semacam enzim yang dibutuhkan oleh fitoplankton untuk perbanyakan sel-selnya. Kelimpahan fitoplankton di Perairan Pulau Pari sangat bervariasi, kelimpahan tertinggi terlihat di ekosistem  mangrove dan keramba dengan kelimpahan fitoplankton mencapai 1,720,000–2,080,000 sel/m 3 dan marga diatom masih mendominasi perairan dibandingkan marga dinoflagellata.
Kelimpahan fitoplankton dan zooplankton  di Perairan Pulau Pari dan sekitarnya  sangat bervariasi, pada bulan Mei  kelimpahan  fitoplankton  tertinggi terlihat di P. Pari mencapai 1.2x10 6 sel/m 3 dengan marga diatom masih mendominasi perairan dibandingkan marga dinoflagellata,  terutama Chaetoceros, dan kelimpahan zooplankton tertinggi mencapai 2.1x10 5 ind/m 3 . Pada bulan September kelimpahan zooplankton tertinggi  masih  terlihat  di P. Pari mencapai 1.7x10 4 ind/m 3 , sedangkan kelimpahan fitoplankton terlihat  di  P. Tikus  mencapai  4.3x10 5 sel/m 3 dengan marga diatom masih mendominasi perairan dibandingkan marga dinoflagellata, terutama Nitzchia (Tabel
2). Tabel 2. Kelimpahan fitoplankton dan zooplankton pada bulan Mei (musim peralihan I) dan September (musim peralihan II) tahun 2011. No. Waktu Lokasi  fitoplankton Sel/m 3 Dominansi diatom zooplankton Individu/m 3 Dominansi zooplankton 1 Mei P. Pari 1.2x10 6 Chaetoceros 2.1x10 5 Nauplius (Copepoda) 2 September  P. Pari - - 1.7x10 4 Cyclopoida (Copepoda) 3 September P. Tikus 4.3x10 5 Nitzchia - -
3.4. Hasil Analisis Bakteri Patogen Pada lokasi penelitian terdapat 9 marga bakteri patogen yang diperoleh dari sampel air laut, sedimen, kekerangan dan pulau-pulau  kecil  sekitar P. Pari  yaitu Aeromonas, Shigella , Proteus, Citro- bacter, Pseudomonas,  Hafnia,  Yersinia,
V ibrio, dan Salmonella (Tabel 3). Bakteri patogen terbagi dalam dua kelompok yaitu
Vibrio dan Salmonella. Pada siput gonggong dan kerang darah ditemukan 4 genus bakteri patogen kelompok Salmonella  yaitu Pseudomonas,  Citro- bacter, Yersinia dan Hafnia ; dan 3 genus bakteri patogen kelompok Vibrio yaitu Vibrio  alginolyticus,  Aeromonas dan Proteus.

## Tabel  3.  Beberapa genus bakteri patogen yang ditemukan  di perairan dan sedimen P.
Pari dan sekitarnya  pada bulan Mei (musim peralihan I) dan September (musim peralihan II)  tahun 2011.
Lokasi Perairan Sedimen Kelompok Salmonella Kelompok Vibrio Kelompok Salmonella Kelompok Vibrio P. Tidung Salmonella V. anguillarum Pseudomonas V. anguillarum P. Tikus Pseudomonas Aeromonas Proteus Yersinia Pseudomonas V. anguillarum P. Kongsi Hafnia Pseudomonas Pseudomonas Proteus Pseudomonas P. Burung Hafnia Pseudomonas Yersinia Pseudomonas P. Tengah Pseudomonas Citrobacter Aeromonas Proteus Pseudomonas Ctrobacter Aeromonas Proteus P. Pari Shigella Pseudomonas Aeromonas Proteus V. alginolyticus V. anguillarum Pseudomonas Citrobacter Aeromonas Proteus V. alginolyticus V. anguillarum St. lamun Pseudomonas Citrobacter Aeromonas Pseudomonas Citrobacter Hafnia Aeromonas St. keramba Pseudomonas Citrobacter Hafnia Aeromonas Proteus V. alginolyticus Pseudomonas Citrobacter Hafnia Aeromonas Proteus V. alginolyticus Kerang gonggong Pseudomonas Citrobacter Yersinia V. alginolyticus Proteus - - Kerang darah Pseudomonas Hafnia Aeromonas Vibrio - -
Keterangan:   V. alginolyticus = Vibrio alginolyticus V. anguillarum   = Vibrio anguillarum
Bakteri kelompok Vibrio yang ditemukan dalam sampel air dan sedimen didominasi oleh bakteri genus Aeromonas sp, dan Proteus sp . Bakteri kelompok Salmonella yang ditemukan di dominasi oleh genus Citrobacter sp dan
Pseudomonas (Tabel 3). Pada biota kekerangan (siput gonggong Strombus turturella dan kerang darah Anadara granosa ) yang dipelihara dalam keramba ditemukan bakteri patogen Aeromonas sp, Vibrio alginolyticus Pseudomonas, Citrobacter, dan Yersinia dalam daging dan isi ususnya. Bakteri-bakteri patogen yang ditemukan tersebut dapat menghambat pertumbuhan biota budidaya dalam fase larva dan megalopa serta merupakan bakteri patogen yang menyebabkan gangguan pencernaan pada hewan berdarah panas dan manusia terutama bakteri Vibrio sp , Salmonella sp dan Fecal coliform (WHO, 1982).
Bakteri yang spesifik ditemukan dalam air adalah Proteus dan dalam sedimen adalah bakteri Y ersinia. Bakteri patogen yang ditemukan pada penelitian ini pada umumnya lemah dan tidak berbahaya kecuali V ibrio sp dan Salmonella sp yang  bisa menyebabkan gastroenteritis.  Bakteri patogen yang
ditemukan di siput gonggong dan kerang darah merupakan indikator bahwa biota laut dapat terinfeksi melalui air laut dan sedimennya.

## 3.5. Hasil Pengukuran Kekerangan Siput Gonggong dan Kerang Darah
Berkaitan dengan kepadatan bakteri indikator pencemaran dan bakteri heterotrofik,  perairan P. Pari dapat digunakan untuk budidaya kekerangan mengingat P. Pari bukan habitat alami kekerangan siput gonggong dan kerang darah (Dody dan  Marasabessy, 2007). Pada pemeliharaan kekerangan di perairan P. Pari selama 7 bulan terjadi penambahan ukuran rata-rata cangkang, baik pada siput gonggong  maupun kerang darah.  Siput gonggong  yang dipelihara di dalam keramba  dapat mengalami pembesaran dan pertumbuhan sebesar  0.67 mm/hari hingga mencapai ukuran  53.68 mm. Pertumbuhan dan pembesaran cangkang kerang darah sebesar 0.90 mm/hari hingga mencapai ukuran biota sebesar 28.5 mm (Gambar  6). Selama waktu pemeliharaan siput  gonggong dan kerang darah  tidak diberi makan karena memanfaatkan serasah lamun yang ada di sekitar perairan ataupun di atas substrat.
Gambar 6. Siput gonggong ( Strombus turturella ) dan kerang darah ( Anadara granosa ) yang dipelihara dalam keramba tancap di Pulau Pari, pada bulan Mei- September 2011.
Penggunaan energi oleh siput gonggong dan kerang darah untuk pertumbuhan cangkangnya akan terus berlangsung hingga mencapai ukuran dewasa. Saat memasuki ukuran dewasa, pemakaian energi tidak lagi digunakan untuk pertumbuhan cangkang dan pertumbuhan somatik lainnya, namun digunakan untuk keperluan perkembangan reproduksi. Siput gonggong dan kerang darah mencapai ukuran dewasa, jika tepi cangkangnya telah tumbuh sempurna dengan ketebalan tertentu yang menunjukkan bahwa siput tersebut telah mencapai ukuran dewasa.

## 3.6. Total Sel
Bakteri pada umumnya berbentuk batang pendek ( rod ) dan bulat ( coccus ). Pada pewarnaan Acridine Orange , sel bakteri yang memancarkan  warna hijau merupakan bakteri yang masih hidup, sedangkan bila berwarna orange merupakan bakteri yang sudah mati. Total sel yang diperoleh disajikan dalam bentuk Tabel 6. Total sel bakteri yang terhitung pada perairan P. Pari dan sekitarnya  (Mei dan  September) ternyata cukup tinggi
yaitu sekitar (0.05-2.1)x10 7 sel/ml. Hal ini menunjukkan bahwa perairan p. Pari dapat digunakan  untuk pembesaran biota laut sebagai tambak budidaya karena mengandung banyak nutrisi yang dibutuhkan oleh bakteri dan adanya ketersediaan nutrisi yang mengakibatkan jumlah bakteri meningkat (Darmayati, 2010).
Ketersediaan nutrisi N dan P memungkinkan jumlah bakteri meningkat dan menyebabkan rantai makanan di laut menjadi besar. Total sel yang diamati termasuk didalamnya sel bakteri pencemar maupun bakteri non patogen,  sehingga jumlah total sel bakteri menunjukkan kepadatan sel bakteri di perairan P. Pari. Pada sel bakteri yang diamati  terdapat perbedaan warna yaitu warna hijau merupakan bakteri yang masih hidup, dan berwarna  orange merupakan bakteri yang sudah mati. Hal ini disebabkan karena sel bakteri yang hidup mampu mereduksi zat warna acridine orange secara enzimatik sehingga menjadi berwarna hijau, sedangkan sel-sel mati akan tampak orange (Hadioetomo, 1993).
Tabel 6. Jumlah total sel bakteri perairan dan sedimen P. Pari dan sekitarnya pada Mei
(musim peralihan I) dan September (musim peralihan II) tahun 2011. Lokasi sampling Perairan Sel/ml Sedimen Sel/ml P. Tidung 20.4x10 6 1.1 x10 7 P. Tikus 0.6x10 6 1.2x10 7 P. Kongsi 4.3x10 6 1.1x10 7 P. Burung 4.2 x10 6 0.7x10 7 P. Tengah 3.4x10 6 1.4x10 7 P. Pari 0.6x10 6 0.6x10 7 St. mangrove 0.5x10 6 2x10 7 St. rumput laut 0.9 x10 6 2.1x10 7 St. keramba 0.5 x10 6 1.3x10 7
3.7. Kondisi Lingkungan
Hasil pengamatan kondisi lingkungan  diperairan  P. Pari meliputi suhu  dan  salinitas.  Hal ini merupakan parameter lingkungan yang berpengaruh terhadap kehidupan biota budidaya  mulai dari telur hingga  dewasa (Arshad et al., 2006).  Suhu air laut perairan P. Pari rata- rata  sekitar  28 o C  dan  nilai salinitas rata- rata 30.5.  Kegagalan budidaya dapat disebabkan oleh tingginya suhu perairan yang  mencapai 33 o C dan salinitas 33%o (Juwana, 2001). Perubahan suhu  yang dapat ditolerir untuk kehidupan biota laut adalah <2 o C dan perubahan salinitasnya <5 dalam rata-rata musiman (Anonim, 2004).

## IV. KESIMPULAN
Berdasarkan aspek bakteriologis- nya,  di perairan maupun di sedimen P. Pari  terdapat Total Bakteri  Koliform, E.coli , beberapa Bakteri Patogen,
kelimpahan Bakteri  Heterotrofik  dan Bakteri Pemecah fosfat-nitrat-amonia.
Kesuburan perairan P. Pari didukung oleh kondisi lingkungan yang memadai, kepadatan bakteri heterotrofik dan  bakteri pemecah fosfat-nitrat-amonia serta kepadatan plankton yang  menyebabkan nutrisi  lingkungannya memenuhi standar untuk kehidupan biota laut.  Sehingga kekerangan  siput gonggong ( Strombus turturella )  dan kerang darah  ( Anadara granosa ) mempunyai pertumbuhan
cangkang yang relatif baik pada pemeliharaan dan pembesaran di perairan P. Pari dan signifikan dengan memanfaatkan serasah dan substrat  di Padang Lamunnya.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Disampaikan kepada para peneliti yang terlibat dalam Penelitian ini dan dibiayai oleh Program Insentif Peneliti dan Perekayasa (PIPP) Ristek  Tahun
Anggaran 2011. Hasil Penelitian disampaikan pada Seminar ISOI PIT IX di Mataram, 22-23 Oktober 2012.

## DAFTAR PUSTAKA
Anonim.    2004.    Keputusan Menteri Negara Lingkungan Hidup, No.51 tahun  2004 tentang baku mutu air laut. Kumpulan peraturan pengendalian kerusakan pesisir dan laut, sub bab baku mutu air laut.  Jakarta.  Lampiran III. 2:20- 26. Aisyah, S. dan D.I. Hartono.   2004. Distribusi bakteri heterotrofik sebagai pendekomposisi bahan organic di danau paparan banjir. Indonesian Consortium on Coastal and Marine Research. 26hlm.
Aksornkoae,  S.    1993.    Ecology and management of mangrove. IUCN,
Bangkok. Thailand. 42p.
Azkab, M.H.   2000.    Struktur dan fungsi pada komunitas lamun. Oseana,
25(3):9-17.
Bitton, G and R.W. Harvey.    1993. Transport of pathogens through soils and aquifers. In: R. Mitchell (ed.). Environmental Micro-
biology.  Willey-Liss Inc.  New York, USA. 103-124pp.
Baqueiro, E., D. Murillo and C.M.
Medina.  2000.  Biological aspects of the conch fishery resource in the northern area of the state of Campeche, Mexico. Proc. Gulf Carib. Fish. Inst ., 51:16-59. Barrow, G.I.  and D.C. Miller.    1976.
Vibrio parahaemolyticus and seafood. In: Microbiology in agriculture, fisheries and food. Academic Press. London. 365p.
Cotner, J.B., H. Bootsma, T. Johengen,
J.F. Cavaletto, and W.S. Gardner.
2000.    Nutrient limitation of heterotrophic bacteria in Florida Bay. Estuaries, 23(5):661-620.
Darmayati, Y.    2010.    Bioremediation of crude oil contaminated sediment using slow release fertilizer : hydrocarbonoclastic bacteria population dynamics. Ilmu
Kelautan, 2(Edisi Khusus):462- 476.
Dody,  S.  dan M.D. Marasabessy.    2007. Pengelolaan sumberdaya siput gonggong ( Strombus turturella ) di Teluk Klabat, Bangka Belitung .
Makalah. Dibawakan pada seminar kompetitif Kaltim Babel, Jakarta,
3-4 September 2007 (tidak
diterbitkan).
Environment Protection Agency  (EPA). 1986. Quality criteria for water. US Government Office of Water Regulations and Standards. Washington D.C. 42-52pp. Elmanama, A.,  S.  Afifi,  and  S.  Bahr. 2006.
Environmental Re- search J .,  101(1):25-33.
Girard, F., I. Batisson, G. Frankel, J. Harel and J.M. Fairbrother.    2005.
Interaction of enteropathogenic and Shiga-toxin
producing
Escherichia  coli with porcine intestinal mucosa: role of intimin and Tir in adherence. Infection and Immunity, 73:6005-6016.
Hadioetomo, R.S.    1993.    Mikrobiologi dasar dalam praktek. PT. Gramedia. Jakarta. Hlm.: 74-76.
Juwana, S.  2000.  Produksi massal benih
rajungan ( Portunus pelagicus ). IV: sistem budidaya. Prosiding Seminar  Nasional  Biologi  XVI , Kampus ITB. Perhimpunan Biologi Indonesia, Cabang Bandung. Volume 2. Hlm.:23-28. Lay, B.   1994.    Analisis  mikroba  di laboratorium. Raja Grafindo
Persada. Jakarta, hlm.:19-24.
Lignell, R.    1992.    Factors controlling phyto- and bacterioplankton in late spring on a salinity gradient in the
Northern Baltic. Marine Ecology Progress Series, 84:121-131. Mardesyawati, A. dan S. Timotius.  2010. Pembelajaran pengelolaan terumbu karang Kepulauan Seribu 2002- 2009: melalui pendekatan pengelolaan perikanan ornmental, pendidikan  pelatihan, dan ekowisata berbasis masyarakat . Yayasan Terumbu Karang Indonesia. Jakarta, hlm.:10-68 .
Mitra, B.K. and Y. Takahata.  2008.  Field bioremediation test for petroleum- contaminated marine beach using slow release fertilizer in Indonesia. Report In: Praseno, D.P. dan  Sugestiningsih.    2000. Retaid di Perairan Indonesia. Pusat Penelitian Oseanografi LIPI.
Jakarta. 82hlm.
Rao, N.S.S.   1994. Soil microorganisms and plant growth. 2 nd ed.
Terjemahan dan Penerbit Univer- sitas Indonesia. 353hlm.
Stern, P.A.  and  M. Wolff.   2006. Population dynamics and fisheries potential of Anadara  tuberculosa. Rev. Biol. Trop., 54(1):87-99. Suhendar, I.S. dan D.W.  Heru.    2007. Kondisi  pencemaran lingkungan perairan di Teluk Jakarta. 49hlm.
Suminto and K. Hirayama.    1993.
Relation between diatom growth and bacterial population in semi mass culture tanks of diatom. Bull.fac.Fish , 74:37-41.
Sutiknowati,  L.I. dan  N.  Ruyitno.    2008. Studi bakteriologis dan peruntuk- kannya terhadap budidaya pada perairan Teluk Klabat, Kepulauan Propinsi Bangka Belitung. Oseanologi dan Limnologi di Indonesia, 34:101-115.
Sutiknowati, L.I.   2011.    Kajian mikrobiologis terhadap kualitas perairan laut  Belitung Barat, Provinsi Bangka Belitung. Oseanologi  dan  Limnologi Di Indonesia , 37(3):521-545. World Health Organization  (WHO). 1982. Bacteriological examination. Examination of Water Pollution Control, 3:273-531. Zmora, O., A. Findiesen, J. Stubblefield, V. Frenkel, Y. Zohar.    2005. Large-scale juvenile production of the blue crab Callinectes sapidus. Aquaculture, 244:129-139.
Diterima  : 23 Oktober 2012 Direvisi  : 4 Februari 2013 Disetujui  : 4 Juli 2013