Penyakit Akar Ganoderma sp. pada Sengon di Jawa Barat dan Jawa Timur
Root Diseases Ganoderma sp. on the Sengon in West Java and East Java
1* 2 2
Elis Nina Herliyana , Darmono Taniwiryono , dan Hayati Minarsih
1 Departemen Silvikultur , Fakultas Kehutanan, Institut Pertanian Bogor Jalan Lingkar Akademik, Kampus IPB Dramaga PO Box 168, Bogor 16680, Indonesia
2 Balai Penelitian Bioteknologi Perkebunan Indonesia, Jalan Taman Kencana No. 1, Bogor 16151, Indonesia
Diterima 3 November 2011/Disetujui 22 Mei 2012

## Abstract
Sengon tree (Paraserianthes falcataria (L.) Nielsen) currently becomes a major forest tree species widely planted by smallholders in Indonesia. The wood of this is quick growing and relatively easy to sell.   However, level of plant safety  sengon  between  crop  plantations  and  other  forestry  need  to  be  assessed  considering  the  sengon  tree  is alternative host of Ganoderma spp. Studies have been conducted to know the presence and diversity of Ganoderma spp. on the sengon tree and some ways inoculation on sengon plant in the nursery.  Survey of Ganoderma conducted in several locations of community forests and cacao ( Theobroma cacao ) plantations in West Java and East Java. Testing of genetic diversity based on RAPD technique. This conducted at the Biotechnology Research Institute of Plantation Indonesia Bogor. Inoculation testing conducted at the Faculty of Forestry, Bogor Agricultural University. The results showed that Ganoderma lucidum was found on the sengon tree and cacao plant, generally on the dead stump. The test results of genetic diversity obtained genetic similarity between G. lucidum from sengon and cacao are quite close. The results of inoculation of G. lucidum testing on seedlings sengon showed that both isolate from cacao and sengon tree able to infect a sengon tree back. The existence of sengon tree as shade plants for cacao plant need to watch out, because production cycle of sengon tree faster than production cycle of cacao plant that is protected.
Keywords: survey of Ganoderma, Paraserianthes falcataria, genetic diversity, inoculation testing

## Abstrak
Pohon  sengon  (Paraserianthes  falcataria)  saat  ini  banyak  diusahakan  oleh  masyarakat  Indonesia.  Selain karena produktifitas kayunya per satuan waktu cukup tinggi, pemasaranannya juga relatif mudah. Bagaimanapun juga  tingkat  keamanan  pohon  sengon  di  antara  pertanaman  perkebunan  dan  kehutanan  lainnya  perlu  dikaji mengingat pohon sengon merupakan inang alternatif Ganoderma spp. Penelitian telah dilakukan guna mengetahui keberadaan dan keragaman Ganoderma spp. pada pohon sengon dan beberapa cara inokulasi pada bibit sengon di rumah kaca. Survey Ganoderma dilakukan di beberapa lokasi hutan rakyat dan perkebunan kakao di Jawa Barat dan  Jawa  Timur.  Uji  keragaman  genetik  berdasarkan  teknik  RAPD  dilakukan  di  Balai  Penelitian  Bioteknologi Perkebunan  Indonesia  Bogor.  Uji  inokulasi  dilakukan  di  Fakultas  Kehutanan,  Institut  Pertanian  Bogor.  Hasil penelitian menunjukkan bahwa Ganoderma lucidum ditemukan pada pohon sengon dan kakao, umumnya pada tunggul yang telah mati. Hasil uji keragaman genetik diperoleh kemiripan genetik yang cukup dekat antara G. lucidum asal sengon dan kakao. Hasil uji inokulasi pada bibit sengon menunjukkan bahwa G. lucidum hasil isolasi dari tanaman kakao dan sengon mampu menginfeksi kembali bibit sengon. Keberadaan sengon sebagai pohon pelindung  untuk  tanaman  kakao  perlu  diwaspadai,  karena  siklus  produksi  sengon  lebih  cepat  dibanding  siklus produksi tanaman kakao yang dilindungi.
Keywords: survei Ganoderma, Paraserianthes falcataria, keragaman genetik, uji inokulasi
*Penulis untuk korespondensi, email: elisherliana@yahoo.com, telp. +62-251-8626806
JMHT Vol. EISSN: 2089-2063 DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012
-
Artikel Ilmiah ISSN: 2087-0469

## Pendahulua
Alih  guna  lahan  hutan  menjadi  lahan  pertanian  atau perkebunan  disadari  menimbulkan  banyak  masalah lingkungan.  Agroforestri  merupakan  salah  satu  sistem pengelolaan lahan yang dapat ditawarkan untuk mengatasi masalah yang timbul akibat adanya alih guna lahan tersebut. Sebagai contoh di daerah hulu Way Besai, hutan yang semula luasnya  mencapai  60%  telah  berubah  menjadi  perkebunan rakyat,  persawahan  di  lembah  bukit,  dan  perkampungan sehingga  hutan  yang  tersisa  hanya  12%  dari  total  luas lahannya. Namun, karena himbauan yang dilakukan selama 15  tahun  terakhir,  semakin  banyak  budi  daya  perkebunan yang semula berbentuk sistem monokultur, secara bertahap berubah  menjadi  budi  daya  perkebunan  campuran  dengan pohon  penaung  (Verbist et  al. 2004).  Salah  satu  tanaman perkebunan yang populer dan banyak dibudidayakan petani di Indonesia adalah kakao. Pohon penaung yang digunakan dalam  pengusahaan  agroforestri  kakao  adalah  tanaman leguminosa,  salah  satunya  sengon.  Dalam  pola  ini  petani akan memperoleh penghasilan dari tanaman pertanian untuk jangka pendek dan untuk jangka panjangnya akan diperoleh penghasilan  dari  tanaman  kehutanan.  Selain  itu,  pohon kehutanan akan dapat menyimpan air dan mencegah longsor.
Selain  sebagai  pohon  penaung,  sengon  juga  bernilai ekonomi sebagai salah satu jenis pohon hutan rakyat. Jawa Tengah  dan  Jawa  Barat  dilaporkan  mempunyai  lebih  dari 60%  dari  total  jumlah  pohon  sengon  yang  ditanam  oleh masyarakat  di  Indonesia  (Krisnawati et  al. 2010).  Secara umum sengon di hutan rakyat di Jawa mencapai luas hampir
3 400.000 ha dan mampu memasok sekitar 895.000 m  kayu per  tahunnya.  Jumlah  ini  merupakan  10%  serapan  kayu berbagai industri di Pulau Jawa. Produktivitas hutan rakyat di
3 -1 -1
Pulau  Jawa  rata-rata  sebesar  2,29  m   ha   tahun   (Arupa 2008).
Menurut Hidayat (2002), sengon merupakan jenis pionir dengan sebaran alami di Maluku, Papua Nugini, Kepulauan Solomon,  dan  Bismark.  Pohon  ini  tumbuh  di  hutan  hujan dataran  rendah  sekunder  atau  hutan  pegunungan  rendah dengan ketinggian 0 - 1.600 mdpl dan optimum pada 0 - 800 mdpl. Jenis ini juga dapat beradaptasi dengan iklim monsoon -1 dan lembap dengan curah hujan 2.000 - 2.700 mm tahun  dan bulan kering hingga 4 bulan serta dapat ditanam pada tapak tidak  subur  tanpa  pupuk.  Sengon  merupakan  jenis  cepat
3 -1 tumbuh (riap 2,5 m  tahun ) yang tidak dapat tumbuh optimal pada  lahan  berdrainase  jelek.  Sengon  juga  bersimbiosis dengan mikoriza arbuskular sehingga pohon ini sangat baik untuk  meningkatkan  kesuburan  tanah  marjinal  (Nusantara 2002).
Kayu sengon termasuk kelas awet IV - V dan kelas kuat IV - V.  Kayunya  lunak  dan  mempunyai  nilai  penyusutan dalam arah radial dan tangensial berturut-turut 2,5 dan 5,2% (Martawijaya  &  Kartasujana  1977).    Kayu  sengon  dapat digunakan  untuk  berbagai  keperluan  seperti  bahan konstruksi  ringan  (misalnya  langit-langit,  panel,  interior, perabotan,  dan  kabinet),  bahan  kemasan  ringan  (misalnya paket, kotak, kotak cerutu dan rokok, peti kayu, peti teh, dan palet),  korek  api,  sepatu  kayu,  alat  musik,  mainan,  dan
n
sebagainya. Kayu sengon juga dapat digunakan untuk bahan baku tripleks dan kayu lapis, serta sangat cocok untuk bahan papan  partikel  dan  papan  blok.  Kayu  sengon  juga  banyak digunakan  untuk  bahan  rayon  dan  pulp  untuk  membuat kertas  dan  mebel  (Krisnawati et  al. 2010).  Namun,  kayu sengon lebih diminati oleh masyarakat maupun perusahaan sebagai  sumber  kayu  komersial  untuk  industri  pengolahan kayu bagi kayu dengan diameter    30 cm (Pirard & Cossalter 2006).
Salah satu kendala budi daya pohon kehutanan yang telah banyak  dilaporkan  berupa  serangan  penyakit  busuk  akar merah  yang  disebabkan  oleh  jamur Ganoderma spp . (Solomon et al. 1993; Lee 2000; Old et al . 2000; Basset &
Peters  2003;  Sankaran et  al. 2005;  Widyastuti  2007; Widyastuti 2010; Wingfield et al. 2010; Gafur et al . 2011). Penyakit  paling  serius  di  hutan  tanaman  industri Acacia mangium dan Eucaliptus sp.  di  Sumatera  disebabkan  oleh penyakit  akar  merah Ganoderma  philippii (Gafur et  al . 2011).   Kejadian serangan Ganoderma dari tahun ke tahun dikhawatirkan  akan  terus  meningkat.  Pada  generasi  kedua hutan  tanaman  industri A.  mangium di  Sumatera  dan Kalimantan,  kejadian  serangan Ganoderma pada  tegakan berumur  3 - 5  tahun  sebanyak  3 - 28%  (Irianto et  al .  2006). Bahkan  serangan Ganoderma dapat  terjadi  pada  seluruh pohon  sengon  yang  ditanam  pada  generasi  kedua  di  Jawa (Widyastuti 2008, komunikasi pribadi).
Serangan Ganoderma spp . pada akar pohon di lapangan sulit dideteksi karena berada di dalam tanah. Akar yang baru terinfeksi  tertutup  oleh  rhizomorfa  berwarna  merah  dan miselium berwarna putih. Secara umum gejala pada bagian pohon di permukaan tanah adalah adanya penurunan vigor yang cepat yang ditandai dengan perubahan warna, pelayuan daun,  dan  akhirnya  kematian  tanaman.  Penguningan  dan pengguguran daun biasanya mendahului kematian tanaman. Tubuh buah jamur kadang terbentuk di bagian bawah batang yang sudah mati, yang berbatasan dengan permukaan tanah. Menurut Bassett & Peters (2003), meskipun tanaman sudah menunjukkan  gejala  sakit,  namun  terkadang  tubuh  buah Ganoderma spp . belum  terbentuk.  Di  lain  pihak,  pada tanaman  yang  tampak  sehat  ditemukan  tubuh  buah Ganoderma spp . di  pangkal  batangnya.  Hasil  pengamatan Gafur et  al .  (2011),  menunjukkan  bahwa  serangan Ganoderma pada  akar  pohon  eukaliptus  memiliki  gejala yang  sama  yaitu  adanya  rhizomorf,  modifikasi  miselium yang berfungsi sebagai alat untuk mempertahankan diri dan dapat  menyebar  ke  tanaman  inang  di  sekitarnya  yang berwarna merah dan miselium berwarna putih.
Penelitian ini dilakukan sebagai salah satu upaya untuk meningkatkan  teknologi  perlindungan  tanaman  terhadap penyakit Ganoderma spp . Tujuan  penelitian  untuk mengetahui:  1)  keberadaan Ganoderma spp  pada  sengon, pohon penaung kakao, dan inang pohon penaung lainnya di Jawa  Barat  dan  Jawa  Timur,  2)  uji  keragaman  genetik Ganoderma spp.  pada  sengon  dan  inang  pohon  penaung lainnya,  dan  3)  untuk  mendapatkan  teknik  inokulasi G. lucidum asal tanaman kakao dan G. lucidum asal sengon ke bibit sengon di rumah kaca.
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012 EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
ISSN: 2087-0469 ñ

## Metode
Survei Ganoderma spp. pada sengon, kakao, dan pohon penaung lain Saat survei, dilakukan pemotretan dan koleksi tubuh  buah  jamur Ganoderma .  Data  keberadaan  serangan Ganoderma diperoleh berdasarkan informasi dari berbagai pihak dan masyarakat setempat. Tubuh buah jamur tersebut yang  masih  segar  dikumpulkan  dari  lapangan di  beberapa hutan rakyat dan perkebunan kakao di Jawa Barat dan Jawa Timur. Tiap sampel dibungkus dengan kertas koran, diberi tanda,  dimasukkan  ke  dalam  kardus,  kemudian  kardusnya dimasukkan  ke  dalam  kantong  plastik  untuk  dikirim  atau dibawa ke laboratorium.
Jaringan  daging  tubuh  buah  ( contex )  yang  terletak ditengah -secara alami steril- diambil satu cuplikan dengan menggunakan  pinset  steril.  Jaringan  tersebut  ditumbuhkan pada agar cawan PDA yang sudah disiapkan. Biakan murni yang  diperoleh  dipindahkan  ke  biakan  miring  untuk disimpan.  Untuk  penyimpanan  dalam  waktu  yang  lama, biakan  pada  media  PDA  dipotong  kecil-kecil  kemudian dimasukkan di dalam botol tertutup rapat berisi air steril. Jika tidak terdapat tubuh buah yang segar, bagian jaringan akar tanaman pada perbatasan antara yang sehat dan yang sakit dipotong  kemudian  diperlakukan  dengan  cara  yang  sama seperti  di  atas.  Identifikasi  isolat-isolat  jamur  dilakukan berdasarkan  pengamatan  tubuh  buahnya  (Stamets  1993, First-Nature 2011).

## Analisis keragaman genetik berdasarkan teknik RAPD
Isolat Ganoderma spp. yang akan digunakan dalam analisis ini ditumbuhkan pada kultur cair untuk kemudian diisolasi DNA totalnya. Potongan DNA total kemudian diamplifikasi secara  acak  menggunakan  primer  acak  panjang  10  basa. Hasil  amplifikasi  acak  kemudian  dilewatkan  melalui  gel elektroforesis  untuk  mengetahui  pola  pita  DNA  yang dihasilkan. Pola pita yang diperoleh kemudian dibandingkan satu sama lain pada seluruh isolat yang diperoleh. Metode lengkap diuraikan dalam Minarsih et al. (2011).
Uji  inokulasi ganoderma pada  bibit  sengon  di  rumah kaca Pembuatan  bahan  pembawa  kayu berupa  potongan kayu  sengon  berdiameter  3,  4,  dan  5  cm  dipotong  dengan panjang  masing-masing  5  cm.  Pengupasan  kulit  kayu dilakukan untuk mempermudah infeksi jamur terhadap kayu (Sinulingga 1989).  Kayu sengon mula-mula direbus selama 2 jam, kemudian direndam dalam air rebusan tersebut selama 12  jam  dan  ditiriskan.  Contoh  kayu  tersebut  selanjutnya disterilisasi  menggunakan  autoklaf  selama  30  menit  pada o suhu 121  C.
Isolat G. lucidum sp.3 asal sengon Ciamis dan isolat G. lucidum sp.4  asal  kakao  sudah  disiapkan  sampai  berumur +10 hari atau sudah memenuhi permukaan media PDA pada wadah botol uji (ukuran diameter 12 - 15 cm dan tinggi 13 - 16 cm)  dan  media  PDA  pada  cawan  petri  (diameter  9  cm). Potongan  kayu  steril  diletakkan  di  atas  isolat  tersebut  dan diinkubasi  selama  1 - 2  bulan  atau  sampai  miselium G. lucidum tumbuh menutupi seluruh permukaan kayu.
Persiapan  media  tanam  berupa  campuran  media  tanah, kompos kotoran sapi, dan arang sekam dengan perbandingan 2:1:1 disterilisasi menggunakan autoklaf. Media tanam steril tersebut segera mungkin digunakan untuk penyapihan agar
tidak terkontaminasi.
Penyapihan dan pemeliharaan bibit sengon yang berumur 1,5  bulan  dan  inokulum  ditanam  bersama  bibit  sengon tersebut.  Penyapihan  dilakukan  pada  sore  hari  untuk mencegah  kematian  bibit  sengon  karena  stres.  Setelah penyapihan biasanya dibutuhkan waktu adaptasi selama 1 - 2 atau  dua  hari  sehingga  bibit  sengon  akan  sedikit  layu. Seluruh  bibit  diletakkan  ke  dalam  sungkup  yang  telah dilapisi dengan paranet 75%.
Perlakuan  inokulasi  berupa  kombinasi  dari  berbagai perlakuan akar, pemberian bahan pembawa kayu/ foodbase, dan jenis isolat G. lucidum . Kombinasi pemberian foodbase seperti  pada  perlakuan  kontrol  terbagi  dua  yaitu  PDA  dan potongan  kayu  sengon.  Perlakuan  dengan  potongan  kayu sengon  terdapat  kombinasi  ukuran  variasi  3,  4,  dan  5  cm. Jumlah  total  untuk  perlakuan  inokulasi  ini  adalah  25 perlakuan. Pengamatan dilakukan tiap hari mulai pada hari pertama  selama  2  bulan  dengan  parameter  pertambahan jumlah daun dan pertambahan tinggi bibit sengon.
Pengolahan  data  dibantu  dengan software SAS.  Model analisis  yang  digunakan  adalah  rancangan  acak  kelompok (RAK)  4  blok  dan  2  faktor.  Model  ini  digunakan  karena setiap  amatan  ditempatkan  pada  kondisi  pembawa  jamur yang  berbeda.  Empat  blok  amatan  terbagi  atas  pembawa kayu diameter 3 cm (K ), pembawa kayu diameter 4 cm (K ),
3 4
pembawa kayu 5 cm (K ), dan pembawa agar (A). Kemudian 5
2  faktor  dalam  model  adalah  faktor  pemotongan  akar  dan faktor  isolat.  Faktor  pemotongan  akar  terdiri  atas: pemotongan  akar  (P )  dan  tanpa  pemotongan  akar  (P ).
1
0 Faktor inokulasi isolat terdiri dari inokulasi isolat G. lucidum asal  sengon  (Sp. ),  inokulasi  isolat G.  lucidum asal  kakao 3
(Sp. ), dan tanpa inokulasi (Sp. ). Jumlah bibit sengon dalam
4
0
setiap unit eksperimen (plot) adalah 3 buah

## Hasil dan Pembahasan
Koleksi isolat Ganoderma spp. berasal dari lokasi pohon sengon  dan  pohon  lain  yang  masih  sekerabat  digunakan sebagai  penaung  tanaman  kopi  dan  kakao.  Sebanyak  45 isolat Ganoderma berhasil dikumpulkan dari pohon sengon, kakao,  lamtoro,  mahoni  ( Swietenia  mahagoni ),  saga ( Adenanthera microsperma ), kihiang ( Albizia procera ), dan rambutan  ( Nephelium  lappaceum ).  Hal  ini  menunjukkan bahwa Ganoderma mempunyai  inang  yang  luas  dan ditemukan  pada  tunggul  ataupun  pada  pohon  yang  masih hidup.
Ganoderma sp.  merupakan  jamur  patogen,  penyebab penyakit akar merah yang menyebabkan kerusakan tanaman perkebunan  dan  kehutanan. Ganoderma sp.  mempunyai sifat  yang  memiliki  kisaran  inang  yang  luas  dan  dapat menyerang  berbagai  jenis  tanaman  kehutanan  dan perkebunan,  misalnya  beberapa  spesies  akasia  ( Acacia mangium,  A.  auriculiformis,  A.  oraria,  A.  crassicarpa ), sengon,  flamboyan  ( Delonix  regia ),  cemara  ( Casuarina equisetifolia ),  angsana  ( Pterocarpus  indicus ),  dan  kelapa sawit  (Widyastuti  1998;  2010).  Semangun  (2000) menyatakan  bahwa Ganoderma spp.  pada  hutan  tanaman dan  perkebunan  dilaporkan  menjadi  patogen  akar  yang potensial  dan  telah  banyak  menyerang  beberapa  jenis tanaman.
.
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012 EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
ISSN: 2087-0469
Koleksi dari Jawa Barat Sebanyak 34 isolat Ganoderma diperoleh  dari  daerah  Jawa  Barat,  terdiri  atas  7  isolat  dari Cisaga  (Ciamis),  3  isolat  dari  Putra  Pinggan  (Ciamis),  20 isolat  dari  Tasikmalaya,  dan  4  isolat  dari  Bogor.  Materi Ganoderma tidak  hanya  dikoleksi  dari  pohon  sengon  saja tetapi juga dikoleksi dari pohon pelindung lainnya. Materi yang diperoleh dari Putra Pinggan kesemuanya berupa tubuh buah jamur, 1 dari pohon sengon dan 2 dari pohon lamtoro. Pohon  lamtoro  yang  masih  hidup  ditemukan  terserang Ganoderma . Materi Ganoderma dari Tasikmalaya diperoleh dari  hutan  sengon  rakyat  dan  dari  pohon  lainnya.  Dari morfologi  tubuh  buah  jamur  yang  berhasil  ditemukan, diperoleh indikasi adanya variasi genetik yang cukup tinggi, demikian  pula  pada  variasi  penampakan  koloni  miselium. Materi  yang  diperoleh  dari  Cisaga  kesemuanya  berupa potongan  jaringan  akar  tanaman  kakao  yang  telah  busuk, namun demikian, setelah diisolasi koloni yang tumbuh bukan jamur Ganoderma sp.
Koleksi dari Jawa Timur Sebanyak 11 materi Ganoderma yang  umumnya  terdiri  atas  tubuh  buah  jamur  yang berhasil  diperoleh  dari  kebun  Ngrangkah  Pawon,  Kediri, Jawa Timur,  milik  PT  Perkebunan  Nusantara  XII.  Hampir setiap  tunggul  pohon  pelindung  di  lokasi  yang  dikunjungi terserang  jamur Ganoderma .  Beberapa  serangan  pada tunggul  pohon  pelindung  tersebut  lokasinya  berdekatan dengan  tanaman  kopi  atau  kakao.  Di  lapangan  ditemukan tunggul sengon dan tunggul kakao yang saling berdekatan, kedua-duanya  terserang Ganoderma .  Dari  hasil  diskusi  di lapang dilaporkan bahwa petugas lapang sering menemukan tubuh  buah Ganoderma yang  menempel  pada  pohon pelindung yang masih hidup khususnya dari jenis lamtoro. Dari hasil diskusi juga terungkap bahwa kematian tanaman kakao  secara  berantai  dijumpai  pada  lokasi  di  mana ditemukan Ganoderma pada tunggul yang terserang.
Setelah  diidentifikasi  berdasarkan  Stamets  (1993)  dan
First-Nature  (2011),  diketahui  bahwa Ganoderma pada lamtoro  asal  Ciamis, Ganoderma pada  pohon  sengon  laut pada tanaman sengon, Ganoderma dari Putra Pinggan, dan Ganoderma pada  tanaman  kakao  Jember  adalah  berturut- turut Ganoderma lucidum sp.1 , G.lucidum sp.2, G. lucidum sp.3, dan G. lucidum sp.4 . Ganoderma pada tunggul mahoni adalah Ganoderma applanatum sp.1 (Gambar 1).
Suriawiria (2001) melaporkan  bahwa  21  spesies Ganoderma hidup  di Indonesia.
Jamur G.  applanatum Menurut  Paterson  (2006) Ganoderma termasuk  divisi  Basidiomycota,  subdivisi Hymenomicotina,  kelas  Heterobasidiomycetes,  ordo Tremellales, dan famili Tremellaceae. Menurut First-Nature (2011)  dan  Stamets  (1993), Ganoderma spp.  merupakan g e n u s   j a m u r   d a r i   f i l u m   B a s i d i o m y c o t a ,   k e l a s A g a r i c o m y c e t e s ,   o r d o   P o l y p o r a l e s ,   f a m i l y Ganodermataceae  (Taxonomy).  Jamur G.  applanatum merupakan  salah  satu  contoh  jamur bracket -jamur  makro yang  tidak edible -tahunan  yang  sangat  umum  ditemukan. Bagian bawah berwarna putih krem dan kalau dilukai akan berbekas cokelat. Pada saat melepaskan spora sebagian besar tubuh buahnya akan tertutupi warna seperti debu berwarna cokelat.    Jamur  yang  tubuh  buahnya  bisa  bertahan  hidup beberapa tahun ini tidak bisa dimakan. Kalau dipotong akan terlihat  lapisan tube-himenium yang  terdiri  dari  pori-pori
Beberapa  jenis Ganoderma spp.  yang  hidup  di  daerah iklim  sedang,  di  antaranya  yaitu G.  tsugae,  G.  sessile,  G. zonatum,  G.  ulcatum,  G.  oregonense,  G.  sequolae dan G. Nevadense (Stamets  1993;  Mayzumi et  al. 1997).  Turner (1981)  melaporkan  bahwa  paling  sedikit  terdapat  15  jenis Ganoderma di berbagai tempat di dunia yang menyebabkan penyakit busuk pangkal batang pada berbagai jenis pohon. Moncalvo et  al .  (1995)  menyatakan  bahwa  terdapat  250 spesies Ganoderma di  dunia  yang  telah  diidentifikasi, sebagian besar terdapat di daerah tropika.
Gambar 1 Keragaman morfologi tubuh buah Ganoderma : (a) G. lucidum sp.1 pada lamtoro asal Ciamis; (b) G. lucidum sp.2 pada pohon sengon laut; (c) G. lucidum sp.3 pada sengon dari Ciamis yang selama ini digunakan dalam industri obat herbal alami; (d) G. lucidum sp.4 pada tanaman kakao Jember; dan (e) G. applanatum sp.1 pada tunggul mahoni.
a b c d e
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012 EISSN: 2089-2063 DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
ISSN: 2087-0469
sporanya. Jumlah lapisan tube ini menunjukkan umur tubuh buah.  Umum  dijumpai  pada  dasar  pohon  hutan  baik  pada daun  lebar  maupun  daun  jarum.  Seringkali  dijumpai  pada batang pohon yang tumbang atau yang berlubang atau pada tunggul kayu. Diameter panjang tubuh buah 15 - 50 cm dan 5 - 10 cm tebal. Pinggiran tubuh buahnya berwarna putih off dan permukaan atas cokelat. Kedalaman pori/ tube -nya lebih dari 12 mm. Diameter lubang pori kecil dan khas (5 buah per 2 mm ),  berwarna  putih  pada  tubuh  buah  muda  kemudian menjadi cokelat seiring umur atau rusak.
Jamur G. lucidum Spesies Ganoderma sangat sulit untuk diidentifikasi secara meyakinkan karena keragamannya yang besar,  demikian  pula  dengan G.  lucidum .  Sebelum  tubuh buahnya matang dan mulai melepaskan awan sporanya yang berwarna  cokelat  yang  akan  menutupi  sendiri  permukaan tubuh  buahnya  dan  juga  batang  kayunya  tempat  jamur tersebut. Hal ini akan menyebabkan tertutupinya penampilan menariknya yang seperti diberi pernis. Tudung tubuh buah dapat mencapai diameter lebih 35 cm dengan ketebalan 4 cm. Tube berwarna cokelat dengan kedalaman 5 - 20 mm dan 8 - 10 mm. Pori-porinya kecil bulat warnanya putih saat tubuh buah  muda,  kemudian  berubah  cokelat  seiring  umur  atau memar/rusak. Jejak spora berwarna cokelat. Bau/rasa tidak significant .  Habitat The  Lacquered  Bracket ini  umumnya pada dasar pohon kehutanan atau pada tunggul dari pohon oak  yang  baru  ditebang,  tetapi  kadang-kadang  ditemukan pada  pohon  daun  lebar.  Pada  saat  tubuh  buah  muda teksturnya lunak, kemudian mengeras melalui musim gugur dan  meluruh  pada  tahun  berikutnya.  Tubuh  buah  muncul biasanya  pada  musim  gugur,  di  Inggris  dan  Irlandia kejadiannya jarang. Mirip spesies G. applanatum , jamur artis ini  mempunyai  perbedaan  yaitu  warna  oker  cokelat  putih dengan margin yang jauh lebih tipis dari G. lucidum (Steyaert 1972; Stalpers 1978; Stamets 1993; First-Nature 2011).
Ganoderma spp. adalah organisme luar biasa yang dapat secara eksklusif mendegradasi lignin menjadi air dan CO , 2 setelah berbagai reaksi yang ada, selulosa menjadi tersedia sebagai  nutrisi  bagi  jamur  tersebut.  Gejala  serangan Ganoderma spp. tingkat ringan pada tanaman secara umum adalah  layu,  tidak  berkembang,  kehilangan  helai  daun sampai  lodoh  pada  batang.  Pada  serangan  tingkat  lanjut, secara  umum  penyakit  dapat  diidentifikasi  dengan kemunculan tubuh buah. Tubuh buah ini keras dan berkayu dengan ukuran yang cukup besar. Ukuran tubuh buah dapat mencapai diameter 15 cm dan ketebalan 5 cm. Warna tubuh buah dari cokelat muda hingga cokelat tua dan bahkan jingga. Bagian atas tubuh buah dapat agak mengkilat dengan bagian bawah  berwarna  putih  (Henessy  &  Daly  2007).  Bagian permukaan  bawah  berwarna  putih  kekuning-kuningan tersusun dari jutaan pori-pori tempat ribuan basidia tumbuh dan menghasilkan jutaan spora (Widyastuti 2007). Dari hasil pengamatan  di  lapangan,  spora Ganoderma diproduksi serentak,  mengepul  bagaikan  asap  rokok  dari  bagian permukaan  bawah  tubuh  buah,  terutama  terjadi  pada  pagi hari  ketika  suhu  di  lapangan  mulai  naik.  Spora  yang diproduksi  secara  serentak  tersebut  sebagian  besar didisposisikan  di  atas  permukaan  tubuh  buah  yang  diduga terjadi  melalui  bantuan  turbulensi  udara  dan  perbedaan muatan antara permukaan tubuh buah dan spora.  Spora yang
diterbangkan oleh angin dan dibawa terbang oleh serangga diduga  memiliki  peran  penting  dalam  penularan  penyakit dari tanaman yang satu ke tanaman yang lain pada jarak yang melebihi jarak perkembangan sistem perakaran.  Flood et al . (2000)  menyatakan  bahwa  mekanisme  penularan  penyakit busuk  akar  terjadi  melalui  perpindahan  spora Ganoderma dari  pohon  yang  terinfeksi  atau  kontak  antara  akar  pohon yang sakit dengan pohon yang masih sehat.
Analisis  keragaman  genetik Ganoderma berdasarkan teknik  RAPD Aplikasi  RAPD  dalam  analisis  keragaman genetik dan identifikasi fungi menurut Minarsih et al. (2011) telah dilakukan antara lain pada Agaricus bisporus (Kush et al . 1992) dan Phytophthora megasperma (Liew et al . 1994). Akan tetapi khusus untuk Ganoderma , penggunaan teknik R A P D   d a l a m   p e n e t a p a n   k e r a g a m a n   m a u p u n pengelompokan spesies belum banyak dilaporkan. Metode RAPD yang digunakan mengacu pada Williams et al. (1990).
Isolasi dan analisis DNA Isolasi DNA baru dilakukan dari jaringan tubuh buah Ganoderma dengan menggunakan dua teknik isolasi yang dibandingkan yaitu metode cepat NaOH dan metode standar Orozco-Castillo (Orozco-Castillo et.al. 1994). Dari kedua metode yang diuji tersebut, berdasarkan analisis  tingkat  kemurniannya,  dapat  ditetapkan  bahwa penggunaan  teknik  isolasi  standar Castillo menghasilkan DNA dengan tingkat kemurnian yang lebih tinggi meskipun memerlukan waktu yang lebih lama dan bahan-bahan yang lebih kompleks. Tingkat kemurnian yang tinggi diperlukan agar dapat diperoleh hasil amplifikasi yang lebih konsisten.
Dua  pasang  primer  yang  digunakan  untuk  amplifikasi ribosomal DNA (rDNA) adalah Gan1/Gan2 dan Gan1/ITS4. Gan1 dan Gan2 adalah primer spesifik yang dirancang untuk Ganoderma dari  daerah  ITS1  berturut-turut  pada  posisi ujung 5' dan 3'. ITS4 adalah primer umum yang diperoleh dari daerah konserf 28S. Kondisi amplifikasi DNA dengan menggunakan  dua  pasang  primer  tersebut  telah  berhasil ditetapkan.
Potongan  DNA  ribosom  secara  spesifik  dapat teramplifikasi  dengan  baik  dari  DNA  yang  diisolasi langsung  dari  tubuh  buah Ganoderma dari  lapang  tanpa pengkulturan  terlebih  dahulu  (Gambar  2).  Penggunaan kedua  pasang  primer  dapat  dilakukan  namun  hasil amplifikasi  dengan  Gan1/Gan2  menghasilkan  pita  yang lebih  tipis  dari  pada  dengan  pasangan  primer  Gan1/ITS4. Hal  tersebut  terjadi  karena  molekul  basa  DNA  yang diamplifikasi  dengan  Gan1/Gan2  lebih  kecil  meskipun jumlah copy- nya  sama.  Gan1/Gan2  mengamplifikasi potongan rDNA  yang  relatif pendek (200  pb)  pada daerah ITS1, sedangkan Gan1/ITS4 mengaplifikasi potongan rDNA yang  relatif  panjang  (600  pb)  termasuk  daerah  ITS1  dan ITS2.  Untuk  keperluan  analisis  dengan  enzim  restriksi, penggunaan  primer  Gan1/ITS4  akan  memberikan  peluang pemotongan yang lebih besar karena ukurannya yang relatif panjang tersebut.
Pemotongan  produk  PCR  dengan  menggunakan  enzim restriksi AluI dan MspI telah dilakukan pada 6 isolat namun ternyata  dengan  dua  enzim  tersebut  tidak  ditemukan  situs pemotongan AluI dan MspI. Uji pemotongan pada isolat lain menggunakan enzim restriksi lain perlu dilakukan.
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012
EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
ISSN: 2087-0469
digunakan  untuk  menguji  keragaman  genetik Ganoderma spp. Analisis cluster dengan metode UPGMA menggunakan perangkat  lunak  NTSYS  versi  2.02  menghasilkan dendrogram  dengan  nilai  koefisien  0,71 - 0,91. Pengelompokan  contoh Ganoderma spp.  yang  berdekatan cenderung terjadi di antara contoh-contoh dari pohon inang dan  wilayah  yang  sama,  namun  beberapa  contoh menunjukkan  pola  yang  berbeda.  Analisis bootstrap menggunakan perangkat lunak Winboot menunjukkan hanya 3  kelompok  sampel  yang  memiliki  tingkat  kepercayaan tinggi  (>50%),  yaitu  T14-T20  (pohon  inang  sengon  asal Tasikmalaya),  PL1-PL2  (pohon  inang  sengon  asal Palembang),  dan  KW2-KW3  (pohon  inang  mahoni  asal Jember).
Minarsih et  al .  (2011)  menyatakan  bahwa  penanda molekuler random  amplified  polymorphic DNA menghasilkan  polimorfisme  yang  tinggi  sehingga  dapat
Gambar 2 Produk amplifikasi rDNA dari 6 isolat Ganoderma dengan menggunakan pasangan primer Gan1/Gan2 (200 pb) dan Gan1/ITS4 (600 pb).
Minarsih et al . (2011) menyatakan bahwa hasil analisis keragaman genetik DNA dengan teknik RAPD terhadap 45 contoh Ganoderma spp. yang berasosiasi dengan beberapa jenis  pohon  (sengon,  mahoni,  lamtoro,  dan  kakao)  dari berbagai wilayah di Indonesia, secara umum terlihat bahwa contoh-contoh  cenderung  mengelompok  menurut  jenis pohon inang yang diinfeksinya. Pengelompokan berdasarkan pohon  inang  ini  dapat  digunakan  untuk  memperkirakan tingkat  virulensi  atau  pola  penularan  penyakit  busuk  akar yang  disebabkan  oleh Ganoderma di  antara  tanaman perkebunan (kakao) dan pohon pelindungnya yaitu sengon dan kerabatnya. Kelompok ke-1, 2, dan 4 terdiri atas contoh- contoh Ganoderma spp.  yang  menginfeksi  pohon  sengon. Hal ini menunjukkan bahwa penularan penyakit busuk akar oleh Ganoderma lebih mudah terjadi di antara pohon-pohon yang sama. Kelompok ke-3 menunjukkan sedikit perbedaan dengan masuknya contoh Ganoderma spp. dari pohon kakao (KW5) ke dalam kelompok tersebut. Oleh karena itu terdapat kemiripan genetik yang cukup dekat antara Ganoderma asal pohon  sengon  dan  kakao.  Sehingga  penularan  penyakit busuk  akar  oleh Ganoderma spp.  dapat  terjadi  di  antara pohon  yang  berbeda.  Kemungkinan  ini  dapat  digunakan sebagai  pertimbangan  untuk  aplikasi  di  lapang  dalam
penggunaan  pohon  sengon  sebagai  pelindung  tanaman kakao. Kekurangan pada penelitian keanekaragaman secara genetik  ini  adalah  belum  diidentifikasinya  semua  isolat- isolat jamur sampai tingkat jenis.
Ganoderma spp.  merupakan  jamur  penyebab  penyakit busuk  akar  yang  biasa  menyerang  akar  dengan  kisaran tanaman  inang  yang  cukup  luas.  Serangan  jamur  ini  biasa ditemukan  pada  berbagai  jenis Leguminoceae (Henessy  & Daly  2007), Rubiaceae (Hindayana et  al. 2002),  bahkan penulis  (Herliyana)  pada  tahun  2010  menemukan Ganoderma spp. yang menyerang pohon eboni dan Palmae di Bogor ( Ebenaceae ) .
Pentingnya  informasi  tingkat  keragaman  genetik Ganoderma Güzeldað  dan  Çolak  (2007)  melaporkan identifikasi G.  lucidum secara  molekuler  yang dikembangkan sebagai obat herbal di Turki.   Chong et al . (2011)  melakukan  identifikasi  secara  molekuler  pada G. boninense yang  berasal  dari  Sabah.  Informasi-informasi tersebut  penting  untuk  melihat  keragaman  genetik  pada Ganoderma . Suryanto et  al .  (2005)  meneliti  secara  morfologi  dan genetik 12 isolat Ganoderma .   Berdasarkan ciri morfologi ditemukan  5  jenis Ganoderma dari  beberapa  tempat  di Sumatera Utara, yaitu 7 G. applanatum , 2 G. lucidum , 1 G. tsugae ,  1 G.  bonninense ,  dan  1 Ganoderma sp.  Analisis keragaman genetik berdasarkan amplifikasi dengan primer ITS1 dan ITS4 menunjukkan bahwa semua Ganoderma yang berhasil dikumpulkan termasuk G. lucidum komersial DXN tidak  memiliki  perbedaan  genetik.  Hasil  ini  boleh  jadi mengindikasikan  bahwa  semua Ganoderma memiliki potensi  obat  yang  kurang  lebih  sama  dengan Ganoderma komersial.
Keragaman genetik yang tinggi pada Ganoderma yang berasosiasi  dengan  tanaman  kelapa  sawit  telah  dilaporkan (Miller et al . 1994, Zakaria et al . 2005). Keragaman genetik Ganoderma yang berasosiasi dengan tanaman sengon, kopi, dan  kakao  belum  pernah  dipelajari.  Pengetahuan  tentang keragaman  genetik  memiliki  peranan  yang  penting  karena pengujian  ketahanan  tanaman  sengon,  kopi,  dan  kakao terhadap Ganoderma harus dilakukan dengan menggunakan
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012 EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
ISSN: 2087-0469
beberapa  isolat Ganoderma dengan  latar  belakang  genetik yang  jelas  yang  mewakili  semua  kerabat Ganoderma yang  berasosiasi  dengan  sengon,  kopi,  dan  kakao.  Di samping  itu,  informasi  tersebut  juga  diperlukan  untuk pengujian  potensi  penggunaan  agensia  hayati  untuk mengendalikan Ganoderma pada sengon, kopi, dan kakao. Uji  ketahanan  ketiga  tanaman  tersebut  harus  dilakukan dengan  menggunakan  cara  yang  baku,  dapat  diulangi  oleh siapapun,  dan  dapat  memberikan  hasil  dengan  tingkat akurasi yang tinggi. Teknologi tersebut sampai saat ini belum tersedia.
Uji  inokulasi  pada  bibit  sengon  di  rumah  kaca Dalam penelitian ini hanya terdapat 2 faktor sehingga hanya ada 1 interaksi  yaitu  interaksi  antara  faktor  pemotongan  akar dengan  faktor  jenis  isolat  jamur.  Rata-rata  pertambahan jumlah anak daun tertinggi terdapat pada perlakuan P  Sp.
0 0
dengan  nilai 14,2.  Rata-rata  pertambahan  anak  daun  yang paling rendah terdapat pada perlakuan P  Sp. dengan nilai -
1 4
0,2. Interaksi dari kedua faktor mempengaruhi pertambahan jumlah anak daun pada tanaman. Perlakuan P  Sp.  berbeda
0 0 nyata  dengan  perlakuan  P   Sp. .  Perlakuan  P   Sp.   dan 1 0 0 0 perlakuan P  Sp.  berbeda nyata dengan perlakuan P  Sp. , P 1 0 1 3 0 Sp. , P  Sp. , dan P  Sp. . Perlakuan P  Sp. , P  Sp. , P  Sp. , dan 3 1 4 0 4 1 3 0 3 1 4
P  Sp.  tidak berbeda nyata satu sama lain (Tabel 1).
0 4
Pengaruh  interaksi  faktor  terhadap  pertambahan  tinggi tanaman, perlakuan P  Sp.  dan P  Sp. , yang nilai memiliki
0 0 1 0
nilai  rata-rata  pertambahan  tinggi  masing-masing  4,5  cm dan  4,1  cm  tidak  berbeda  nyata  satu  sama  lain.  Perlakuan P  Sp.  dan P  Sp.  berbeda nyata dengan perlakuan P  Sp. ,
0 0 1 0 0 3 P  Sp. , P  Sp. , dan P  Sp.  yang masing masing bernilai 0,3 1 3 0 4 0 4
cm, 0,3 cm, -0,07 cm, dan -0,3 cm (Tabel 2).
Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa interaksi faktor jenis  isolat  dan  pemotongan  akar  mempengaruhi pertumbuhan  tanaman  secara  nyata.  Hal  tersebut menunjukkan  adanya  perbedaan  antara  perlakuan  tanpa inokulasi dan perlakuan dengan inokulasi, sehingga terdapat gambaran  bahwa  metode  inokulasi G. lucidum spp.  yang dilakukan cukup efektif.
Isolat G. lucidum , baik yang diambil dari tanaman sengon ( G. lucidum sp.3/Sp. ) maupun tanaman kakao ( G. lucidum
3
sp.4/Sp. ),  mampu  menginfeksi  tanaman  sengon  dengan
4
baik. Tanaman yang diberikan perlakuan isolat Sp.  memiliki
3
pertumbuhan yang lebih buruk terhadap pertambahan tinggi dan  pertambahan  jumlah  anak  daun  dibandingkan  dengan tanaman yang dberikan perlakuan isolat Sp. , namun kedua 4 isolat  yang  diujikan  tidak  berbeda  nyata  pada  tingkat kepercayaan 95%. Hal tersebut mengindikasikan bahwa G. lucidum yang menginfeksi tanaman kakao dapat menular ke pohon  sengon,  begitu  pula  sebaliknya.  Dengan  demikian dapat dikatakan bahwa sistem agroforestri tanaman cokelat dan  sengon  memiliki  risiko  epidemi  penyakit  busuk  akar. Hasil penelitian juga mengindikasikan bahwa sengon pada tingkat  semai  dapat  terinfeksi G.  lucidum apabila  media tanam telah terkontaminasi dengan tingkat konsentrasi yang cukup tinggi.
Jenis pembawa yang paling efektif pada metode inokulasi ini adalah pembawa kayu dengan diameter 5 cm dengan nilai rata-rata pertambahan tinggi dan jumlah daun 0,4 cm dan 0,2 cm. Selain itu pada perlakuan kayu ditemukan tanda penyakit berupa miselium dan nekrosis atau kematian sel pada akar dan tubuh buah.
Pengamatan terhadap perlakuan inokulasi yang memiliki kecenderungan pertumbuhan tinggi negatif adalah mungkin. Nilai  minus  disebabkan  oleh  berkurangnya  rata-rata pertambahan jumlah anak daun dan tinggi tanaman. Secara kasat mata, pada 3 minggu pertama setelah penanaman, tidak ada perbedaan yang mencolok dari perkembangan tanaman sengon  pada  setiap  perlakuan.  Pada  minggu  ke-5, pertumbuhan tanaman antara perlakuan Sp. , Sp. , dan Sp.
0 3 4
mulai  terlihat  perbedaannya.  Perbedaan  tersebut  terdapat pada  perkembangan  pucuk  tanaman  yang  terhambat. Pengukuran  tinggi  bibit  adalah  pengukuran  tinggi  bibit tanaman  dari  pangkal  batang  sampai  titik  tumbuh  teratas dengan  satuan  sentimeter  (Permenhut  No.  3  Tahun  2004). Kecenderungan  ini  menunjukkan  bahwa  pada  perlakuan inokulasi  jamur G.  lucidum sangat  mempengaruhi perkembangan  bibitnya.  Efek  ini  akan  segera  menjalar  ke sistem  respirasi  pada  daun  karena  unsur  hara  yang dibutuhkan  oleh  tanaman  menjadi  sangat  berkurang. Menurut  Rusdiana et  al. (2000),  akar  merupakan  pintu masuk bagi hara dan air dari tanah yang sangat penting untuk proses fisiologi pohon. Dengan demikian, jika fungsi bagian akar  terganggu  maka  pertumbuhan  bagian  pucuk  akan terganggu pula.
Faktor pemotongan akar yang tidak berbeda nyata satu sama  lain  disebabkan  oleh  perbedaan  reaksi  dari  tanaman
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012 EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100 - Artikel Ilmiah ISSN: 2087-0469
Perlakuan interaksi 2 faktor
Rata -rata pertambahan jumlah anak daun
Pemotongan akar, tanpa inokulasi (P 1 Sp. 0 ) 7,5 b Tanpa pemotongan akar, tanpa inokulasi (P 14,2 a Tanpa Pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.3 dari sengon (P 0,7 c Pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.3 (P 1,3 c Pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.4 dari kakao (P 0,2 c Tanpa pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.4 (P
2,4 c
Tabel 1  Pengaruh interaksi antara faktor pemotongan akar dan jenis isolat terhadap pertambahan jumlah anak daun
Keterangan: huruf yang sama di belakang angka menunjukkan pengaruh yang tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%
0 Sp. 0 )
0 Sp. 3 ) 1 Sp. 3 ) 1 Sp. 4 ) 0 Sp. ) 4

## Tabel 2 Pengaruh interaksi antara faktor pemotongan akar dan jenis isolat terhadap pertambahan tinggi tanaman
Keterangan: huruf yang sama di belakang angka menunjukkan pengaruh yang tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%
yang  diberikan  perlakuan  tanpa  inokulasi  dan  perlakuan inokulasi  terhadap  pemotongan  akar.  Tanaman  yang diberikan  perlakuan  potong  akar  pada  perlakuan  tanpa inokulasi (Sp. P ) memiliki rata-rata pertambahan anak daun 0 1 yang lebih tinggi (dibandingkan perlakuan tanpa inokulasi tanpa  potong  akar  (Sp. P ).  Tanaman  yang  diberikan
0 0
perlakuan  inokulasi  dan  potong  akar  (Sp.   P dan  Sp. P )
3 1 4 1
memiliki rata-rata pertambahan jumlah anak daun dan tinggi yang lebih rendah dibandingkan perlakuan inokulasi tanpa pemotongan akar (Sp.  P dan Sp. P ).
3 0 4 0 Taniwiryono  dan  Panji  (1999)  menyatakan  bahwa penularan Ganoderma terjadi  melalui  kontak  akar  dengan cendawan luka pada akar dapat meningkatkan kemungkinan infeksi  dari  jamur  busuk  akar.  Gejala  yang  dialami  oleh tanaman  yang  terinfeksi  jamur Ganoderma spp.  yaitu terhambatnya  perkembangan  pucuk,  akar,  dan  daun  yang rontok. Pada penelitian ini perlakuan pemotongan akar dan tanpa  pemotongan  akar  pada  perlakuan  inokulasi  tidak berbeda  nyata,  sehingga  dapat  di  simpulkan  bahwa G. lucidum dapat menginfeksi akar tanaman muda, baik yang terluka ataupun yang tidak terluka.
Tubuh buah Ganoderma pada bibit sengon tidak muncul pada pangkal batang sebagaimana ditemukan pada tanaman dewasa  (Basset  &  Peters  2003). Ganoderma dari  kayu diduga berkembang dan merambat melalui arang sekam dan membentuk  tubuh  buah  pada  bagian poly  bag yang berlubang. Arang sekam digunakan sebagai campuran media dalam  penelitian  ini  karena  memiliki  porositas  yang  baik bagi perkembangan akar dan memiliki daya pegang air yang tinggi.  Namun,  rupanya  baru-baru  ini  media  arang  sekam juga  telah  digunakan  sebagai  media  bahan  pembawa mikoriza arbuskula untuk aplikasinya di lapangan (Nurbaity et al. 2009).
Infeksi  patogen  lebih  mudah  terjadi  melalui  luka  dan lentisel,  walaupun  penetrasi  secara  langsung  mungkin terjadi.  Pada  tanaman  karet  sering  ditemukan  bagian  leher akar  pecah  dan  merupakan  tempat  yang  baik  bagi  infeksi jamur  patogen  kemudian  menjalar  ke  bagian  yang  lebih dalam  dari  akar.  Tanaman  akan  mengadakan  reaksi pertahanan seperti pembentukan kambium, gabus, dan kalus. Akan  tetapi,  hal  ini  sering  tidak  dapat  menahan perkembangan  lanjut  patogen.  Serangan  akan  lebih  tinggi akan ditemukan pada tanaman okulasi dibandingkan dengan tanaman biji. Hal ini disebabkan oleh adanya bagian-bagian
luka  pada  tanaman  okulasi,  sehingga  memudahkan Ganoderma spp. untuk menginfeksinya (Sinulingga 1989).

## Kesimpulan

## Ucapan Terima  Kasih
Penulis  mengucapkan  terima  kasih  kepada  Pimpinan Program  KKP3T  Badan  Litbang  Kementerian  Pertanian. Penelitian ini dapat terlaksana atas dukungan pendanaan dari APBN  Sekretariat  Badan  Litbang,  Kementerian  Pertanian Tahun 2010. Penghargaan juga disampaikan pada semua tim peneliti dan mahasiswa yang turut membantu terlaksananya penelitian ini.

## Daftar Pustaka
Arupa. 2008. Hutan rakyat Wonosobo. http://www.arupa.or. id/index2.php?option=  comcontent&do_pdf=1&id=39 [16 November 2010].
Basset K, Peters RN. 2003. Ganoderma : A Significant root pathogen.http://www.arborilogical.com/articles/ganode rma.htm. [6 Februari 2010].
Chong KP et al .   2011.   First identification of Ganoderma boninense isolated  from  Sabah  based  on  PCR  and sequence homology. African Journal of Biotechnology 10(66):  14718 - 14723.
.
[Dephut]  Departemen  Kehutanan  RI.    2004.    Peraturan Menteri  Kehutanan  Nomor  4  tentang  Petunjuk Pelaksanaan  Penilaian  Bibit  Gerakan  Nasional Rehabilitasi  Hutan  dan  Lahan.  http://www.dephut. go.id/files/ l2_3_p03_04.pdf, [20 Februari 2010].
Ganoderma dapat  muncul  pada  tanaman  sengon  baik pada  tunggul  yang  telah  mati  sebagai  saprofit  fakultatif maupun pada tanaman yang masih hidup sebagai patogen. Kemiripan genetik yang cukup dekat antara G. lucidum asal pohon  sengon  dan  kakao  diduga  dapat  menyebabkan penularan  penyakit  busuk  akar  oleh Ganoderma spp.  di antara  pohon  tersebut.  Pola  agroforestri  antara  tanaman kehutanan  dan  tanaman  pertanian  memiliki  risiko  terkena epidemi  penyakit  busuk  akar,  sehingga  diperlukan pertimbangan  jenis  tanaman  agroforestri  yang  bukan merupakan inang alternatif dari penyakit pohon tertentu.
http://dx.doi.org/10.5897 /AJB11.1096
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012
EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
Artikel Ilmiah ISSN: 2087-0469
Perlakuan interaksi 2 faktor Rata- rata pertambahan tinggi (cm) Tanpa pemotongan akar, tanpa inokulasi (P 4,5 a Pemotongan akar, tanpa inokulasi (P 4,1 a Tanpa Pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.3 sengon (P 0,3 b Pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.3 (P 0,3 b Tanpa Pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.3 kakao (P -0,07 b
Pemotongan akar, inokulasi G. lucidum sp.4 kakao (P
-0,3 b
1 1 Sp. 0 ) 1 Sp. 0 )
0 Sp. 3 ) 1 Sp. 3 ) 0 Sp. 4 )
1 Sp. 4 )
First-Nature.  2011.  Bracket  and  crust  fungi  Gallery. http://www.first-nature.com/fungi/~brackets.php  [20 November 2011].
Flood J, Hasan Y, Turner PD, O'Grady EB.  2000.  The spread of Ganoderma from its infective sources in the field and its  implications  for  management  of  the  disease  in  oil palm. Di dalam: Flood   J, Bridge PD, Holderness   M, editor. Ganoderma  Diseases  of  Perennial  Crops . Wallingford, UK:CABI Publishing. hlm101 - 112.
Gafur A, Tjahjono B, Golani GD.   2011.   Patogen dan opsi pengendalian  penyakit  busuk  akar Ganoderma di hutan tanaman industri. Di dalam: Simposium Nasional dan  Lokakarya  Ganoderma:  Sebagai  Patogen Penyakit Tanaman dan Bahan Baku Obat Tradisional ; Bogor,  2 - 3  November  2011.  Bogor:  Balai  Penelitian Bioteknologi Perkebunan Indonesia.
Güzeldað G, Çolak Ö.   2007.   Molecular identification of Ganoderma lucidum from Turkey. International Journal of Agriculture & Biology 9(5):767 - 770.
Henessy C, Daly A.   2007. Ganoderma Diseases . Darwin: Northern  Territory  Government,  Plant  Pathology, Diagnostic Services.
Hidayat  J.  2002. Informasi  Singkat  Benih . Bandung: Direktorat  Perbenihan  Tanaman  Hutan  dan  Indonesia Forest Seed Project.
Hindayana D, Judawi D, Prihayanto D, Luther GC, Mangan J,  Untung  K,  Sianturi  M,  Warnodiharjo  M,  Mundy  P, Riyatno  2002. Musuh  Alami,  Hama  dan  Penyakit Tanaman  Kakao . Edisi  Kedua.  Jakarta:  Direktorat Perlindungan  Perkebunan,  Direktorat  Jenderal  Bina Produksi Perkebunan Departemen Pertanian.
Irianto RSB et al . 2006. Incidence and spatial analysis of root  rot  of Acacia  mangium in  Indonesia. Journal  of Tropical Forest Science 18(3): 157 - 165.
Krisnawati  H,  Varis  E,  Kallio  M,  Kanninen  M.  2010. Panduan  bertajuk,  “ Paraserianthes  falcataria (L.) Nielsen:  Ekologi,  Silvikultur  dan  Produktivitas”. Bogor: CIFOR.
Lee  SS.    2000.    The  Current  Status  of  Root  Diseases  of Acacia mangium Wild. Di dalam: Flood J, Bridge PD, Holderness  M,  editor. Ganoderma  Diseases  of Perennial Crops .   Wallingford, UK: CABI Publishing. hlm71 - 79.
Martawijaya A, Kartasujana I. 1977. Ciri Umum, Sifat dan Kegunaan  Jenis-Jenis  Kayu  Indonesia .  Publikasi Khusus No. 41. Bogor: LPHH.
Mayzumi  F,  Okamoto  H,  Mizuno  T.  1997.  Cultivation  of reishi  ( Ganoderma  lucidum ). Food  Reviews International 13:365 - 82. http://dx.doi.org/10.1080
/87559129709541118.
Miller  RNG,  Holderness  M,  Bridge  PD,  Paterson  RRM, Sariah  M,  Hussin  MZ,  Hilsley  EJ.  1994.  A  multi- disciplinary  approach  to  the  characterization  of Ganoderma in  oil-palm  cropping  systems.  Di  dalam: Proceedings  of  contributed  symposium  59A,  B,  5th International Mycological Congress . Vancouver, 14 - 21 August, 1994. hlm57 - 66.
Minarsih  H,  Lingga  DNP,  Taniwiryono  D,  Herliyana  EN. 2011. Analisis keragaman genetik Ganoderma spp. yang berasosiasi  dengan  tanaman  kakao  dan  tanaman pelindungnya  menggunakan random  amplified polymorphic DNA  (RAPD). Jurnal  Menara Perkebunan (MP) 79(1): 6 - 14.
Moncalvo JM, Wang HF, Hseu RS.  1995.  Gene phylogeny of Ganoderma  lucidum complex  based  on  ribosomal DNA sequences comparison with traditional taxonomic characters. Mycological  Research 99:1489 - 1499.
Nurbaity A, Herdiantoro D, Mulyani O. 2009. Pemanfaatan bahan organik sebagai bahan pembawa inokulan fungi mikoriza arbuskula. Jurnal Biologi 13(1):7 - 11.
N u s a n t a r a   A D .   2 0 0 2 .   Ta n g g a p   s e m a i   s e n g o n ( Paraserianthes  falcataria (L)  Nielsen)  terhadap inolukasi  ganda  cendawan  mikoriza  arbuskular  dan Rhizobium sp . Jurnal  Ilmu-Ilmu  Pertanian  Indonesia 4(4): 62 - 70.
Old KM, Lee SS, Sharma JK, Yuan ZQ.   2000. A Manual of  Diseases  of  Tropical  Acasias  in  Australia,  South- East  Asia  and  India .  Jakarta:  Center  for  International Forestry Research (CIFOR).
Orozco-Castillo, Chalmers KJ, Waugh R, Powell W. 1994.
Detection  of  genetic  diversity  and  selective  gene  in coffea  using  RAPD  markers. Theoretical  and Applied Genetics 87: 332 - 339.
Paterson  RRM.  2006.  Ganoderma  Disease  of  Oil  Palm-A
White Rot Perspective Necessary for Integrated Control. Universidade  do  Minho.  http://repositorium.sdum. uminho.pt/bitstream/1822/7349/1/Paterson_CropProte ction2%5B1%5D.pdf [17 Mei 2010].
Pirard  R,  Cossalter  C.    2006.    The  Revival  of  Industrial Forest Plantations in Indonesia's Kalimantan Provinces Will they help eliminate fiber shortfalls at Sumatran pulp mills or feed the China market?  Working Paper No 37. Jakarta: CIFOR.
Rusdiana  O,  Fakuara  Y,  Kusmana  C,  Hidayat  Y.  2000. Respon  pertumbuhan  akar  tanaman  sengon ( Paraserienthes  falcataria )  terhadap  kepadatan  dan kandungan  air  tanah  podsolik  merah  kuning. Jurnal Manajemen Hutan Tropika 6(2):45 - 53.
Sankaran KV, Bridge PD, Gokulapalan C. 2005.  Ganoderma diseases  of  perennial  crops  in  India:an  overview.
http://dx.doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80798-3.
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012
EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
ISSN: 2087-0469
Journal Mycopathologia 159:143 - 152. .
Semangun  H.  2000. Penyakit-Penyakit  Tanaman Perkebunan  Indonesia .  Yogyakarta:  Gadjah  Mada University Press.
Sinulingga  W.  1989. Pengendalian  Biologi  Penyakit Cendawan  Akar  Putih  pada  Tanaman  Karet .  Pusat Penelitian Perkebunan Sei. Putih, Galang. hlm 1 - 7.
Solomon  JD,  Leininger  TD,  Wilson  AD,  Anderson  RL, Thompson LC, McCracken FI. 1993. Ash Pests: A Guide to  Major  Insect,  Diseases,  Air  Pollution  Injury  and Chemical Injury . Gen. Tech. Rep. SO-96. New Orleans, LA:  U.S.  Department  of  Agriculture,  Forest  Service, Southern Forest Experiment Station.
Stalpers JA. 1978. Identification of wood-inhabiting fungi in pure culture. Studies in Mycology 16:1 - 248.
Stamets  P.  1993. Growing  Gourmet  and  Medicinal Mushrooms . Berkeley: Ten Speed Press.
Steyaert RL. 1972 . Species of Ganoderma and related genera mainly of the Bogor and Leiden herbaria. Persoonia 7:
55 - 118.
Suriawiria U. 2000. Budidaya Ling Zhi dan Maitake Jamur Berkhasiat Obat . Jakarta: Penebar Swadaya.
Suryanto  D,  Andriani  S,  Nurtjahja  K.  2005.  Keragaman genetik Ganoderma spp.  dari  beberapa  tempat  di Sumatera Utara. Jurnal Ilmiah Pertanian KULTURA 40
(2):70 - 76.
Suwanto A, Friska AH, Sudirman LMI. 1996. Karakteristik Pseudomonas  fluorescens B29  dan  B39:  Profil  DNA genom, uji hipersensitif dan asai senyawa biotik. Jurnal Hayati 3(1):15 - 20.
Taniwiryono  D,  Panji  T.  1999. Ganoderma ,  dari  penyakit tanaman  ke  obat  serbaguna  bagi  manusia.  Di  dalam:
http://dx.doi.
org/10.1007/s11046-004-4437-1
Prosiding  Pertemuan  Ilmiah  Tahunan  Teknis Bioteknologi  Perkebunan  untuk  Praktik; Bogor,  5 - 6 Mei 1999. Bogor: Perhimpunan Mikrobiologi Indonesia Cabang Bogor. hlm 31 - 37.
Turner  PD.    1981. Oil  Palm  Disease  and  Disorder,  first edition . Oxford: Oxford University Press.
Verbist  B et  al .  2004.  Peranan  agroforestri  dalam mempertahankan fungsi hidrologi daerah aliran sungai (DAS). Jurnal Agrivita 26(1):1 - 8.
Widyastuti  SM.  1998.    Pengendalian  hayati  penyakit  akar merah  pada  akasia  dengan Trichoderma . Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia 4(2):65 - 72.
Widyastuti  SM.  2007. Peran  Trichoderma  spp.  dalam Revitalisasi  Kehutanan  di  Indonesia .  Yogyakarta:
Gadjah Mada University Press.
Widyastuti  SM.    2010. Laporan  Akhir  Program  Tanoto Professorship Award. Penelitian Metode Pengendalian Ganoderma sp. Pada  Tanaman  Perkebunan  dan Kehutanan .  Yogyakarta:  Fakultas  Kehutanan Universitas Gadjah Mada .
Williams JGK, Kubelik AR, Livak KJ, Rafalski JA, Tingey SV.  1990.  DNA  polymorphism  amplified  by  arbritary primers  are  useful  as  genetic  markers. Nucleic  Acids Research 18:6531 - 6535.
.
Wingfield  MJ,  Slippers  B,  Roux  J,  Wingfield  BD.    2010.
Novel  associations  between  pathogens,  insects  and tree  species  threaten  world  forest. New  Zealand Journal of Forest Science 40 suppl.:S95 - S103.
Zakaria L, Kulaveraasingham H, Guan TS,  Abdullah F, Wan HY.  2005.  Random  amplified  polymorphic  DNA (RAPD) and random amplified microsatellite (RAMS) of  ganoderma  from  infected  oil  palm  and  coconut stumps in Malaysia . Asia Pacific Journal of Molecular Biology and Biotechnology 13 (1):23 - 24.
http://dx.doi.org/10.1093 /nar/18.22.6531
JMHT Vol. XVIII, (2): 100 109, Agustus 2012
EISSN: 2089-2063
DOI: 10.7226/jtfm.18.2.100
ISSN: 2087-0469