Abstrak —Kompos merupakan hasil  degradasi bahan organik secara  aerob  maupun  anaerob  dengan  memanfaatkan  potensi mikroorganisme  sebagai  aktivator  kompos.  Kualitas  aktivator kompos sangat tergantung dari kecepatan degradasi yang dimiliki dan  lama  masa  simpannya.  Medium  pertumbuhan  berpengaruh penting  terhadap  masa  simpan  aktivator  kompos  karena  untuk mengomptimalkan viabilitas sel dalam waktu yang lama.
Salah  satu  komponen  medium  pertumbuhan  adalah  nitrogen berupa  protein  atau  senyawa  peptida  yang  dapat  memengaruhi masa simpan ( life span ) aktivator kompos. Kompleksitas struktur protein menyebabkan pemanfaatan nitrogen untuk pertumbuhan juga  berbeda,  yang  salah  satunya  berpengaruh  terhadap  masa simpan aktivator kompos.
Tujuan  penelitian  ini  adalah  mengetahui  pengaruh  beberapa sumber nitrogen antara lain yeast extract, pepton, susu skim, dan rumput  laut,  yang  berpotensi  untuk  meningkatan  masa  simpan aktivator kompos.
Konsorsium  aktivator  kompos  berupa Aspergillus  niger dan Rhizobium sp. dengan  perbandingan  1:1  dikultur  pada  medium variasi  sumber  nitrogen  dengan  konsentrasi  yang  berbeda  yaitu 2,5%  dan  1,25%  dengan  3  kali  pengulangan.  Jumlah  koloni dihitung  dengan  metode  TPC  ( Total  Plate  Agar ),  Kadar  protein terlarut pada medium kultur dianalisis dengan metode Bradford. Hasil  kultur  aktivator  kompos  diaplikasikan  untuk  pembuatan kompos.  Data  dianalisis  secara  deskriptif  berupa  kurva pertumbuhan  koloni,  kemiringan  kurva  pertumbuhan  aktivator kompos,kadar  protein  terlarut,  suhu  kompos,  dan  tabel  analisis rasio  C/N.  Hasil  penelitian  didapatkan  bahwa  medium  rumput laut  konsentrasi  1,25%  mampu  meningkatkan  masa  simpan aktivator  kompos  karena  hasil  kemiringan  kurva  pertumbuhan relatif  rendah  sehingga  diasumsikan  jumlah  sel  yang  cenderung stabil.  Sedangkan  nilai  rasio  C/N  terbaik  adalah  aktivator kompos  pada  medium  rumput  laut  konsentrasi  1,25%  karena nilai  yang  didapatkan  sebesar  14,15/1.Sehingga  medium  rumput laut konsentrasi 1,25% dapat dimanfaatkan untuk meningkatkan masa simpan aktivator kompos.
Kata  kunci aktivator  kompos,  masa  simpan,  variasi  dumber nitrogen.

## I. PENDAHULUAN
OMPOS  merupakan  hasil  degradasi  bahan  berbasis molekul  organik  yang  melibatkan  mikroorganisme termofilik  aerobik  dan  anaerobik  melalui  proses  oksidasi secara  eksotermal  [1,2,3].  Kompos  mengandung  material humus (unsur N, P, K) yang dapat meningkatkan produktivitas tanaman  [1].  Komponen  penting  yang  diperlukan  dalam pembuatan  kompos  antara  lain  substrat  dan  mikroorganisme
yang  termasuk  dalam  kelompok  bakteri  mesofilik,  termofilik, fungi, dan yeast [4, 5].
Proses  pembuatan  kompos  membutuhkan  mikroorganisme yang  mampu  melakukan  degradasi  bahan  organik  dengan menghasilkan  berbagai  macam  enzim  hidrolisis  [3].  Proses komposting  dapat  dipercepat  dengan  penambahan  aktivator berupa  konsorsium  mikroba  yang  memiliki  fungsi  sinergis dalam  mendegradasi  substrat.  Konsorsium  mikroorganisme tersebut pada umumnya terdiri dari golongan bakteri dan fungi yaitu kelompok Acetobacter sp., Rhizobium sp., Lactobacillus sp., Streptomyces sp., dan Aspergillus sp. [6,7]. Pada saat ini, aktivator  kompos  telah  banyak  dikomersialkan  yaitu  dengan nama dagang misalnya EM4, Superdec, Orgadec, dan lain-lain. Kualitasnya  aktivator  kompos  sangat  tergantung  dari kecepatan degradasi yang dimiliki dan lama masa simpannya.
Masa  simpan  ( life  span )  aktivator  merupakan  lama  waktu viabilitas  konsorsium  mikrobia  yang  bisa  hidup  pada  kondisi tertentu  [8].  Peningkatan  waktu  simpan  aktivator  kompos bertujuan  untuk  mengomptimalkan  viabilitas  sel  dalam  waktu yang lama dengan menjaga kestabilan genetik dan mengurangi aktivitas  metabolisme  [9.10,11].  Peningkatan  masa  simpan aktivator kompos terjadi ketika sel mengalami kondisi dorman yaitu diawali dengan produksi ppGpp (nukleotida guanosin 3’- 5’bifosfat) yang berperan dalam memodulasi aktivitas ribosom pada  proses  sintesis  protein  [12].  Kondisi  ini  akan mengakibatkan  sel  berhenti  melakukan  pertumbuhan  dan melakukan perubahan struktur morfologi berupa pembentukan endospora serta perubahan struktur miselium [12].
Medium  pertumbuhan  mikroorganisme  berperan  penting dalam  pengaturan  masa  simpan  sel  untuk  jangka  waktu  yang lama  [13,  14].  Salah  satu  komponen  medium  pertumbuhan adalah  nitrogen  berupa  protein  atau  senyawa  peptida  yang dapat  memengaruhi  masa  simpan  aktivator  kompos  [15]. Kompleksitas  struktur  protein  menyebabkan  pemanfaatan nitrogen untuk pertumbuhan juga berbeda, yang salah satunya berpengaruh terhadap masa simpan aktivator kompos [16, 17]. Peningkatan  masa  simpan  ( life  span) dengan variasi  sumber protein  belum  banyak  dipelajari  pada  saat  ini,  sehingga penelitian  ini  menguji  beberapa  sumber  nitrogen  antara  lain yeast  extract ,  pepton,  susu  skim,  dan  rumput  laut,  yang berpotensi  untuk  meningkatan  masa  simpan  aktivator  kompos selama 2 bulan.

## Peningkatan Masa Simpan Aktivator Kompos melalui Variasi Sumber Nitrogen
Arida Wahyu Barselia, dan Endry Nugroho Prasetyo Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS)
Jl. Arief Rahman Hakim, Surabaya 60111 Indonesia
e-mail : endry@bio.its.ac.id
K

## II. METODOLOGI

## A. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  tanggal  12  Oktober  2015 sampai  tanggal  31  Desember  2015  di  Laboratorium Mikrobiologi  dan  Bioteknologi  jurusan  Biologi,  Fakultas Matermatika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam,  Institut  Teknologi Sepuluh Nopember.

## B. Metode yang digunakan
Tahapan  penelitian  diawali  dengan  peremajaan  aktivator kompos  yaitu A.  niger dan Rhizobium sp.  Aktivator  kompos dikonsorsium  dengan  perbandingan  1:1  pada  medium  cair. Medium  variasi  sumber  nitrogen  dibuat  dengan  dua konsentrasi  yang  berbeda  yaitu  2,5%  dan  1,25%  serta pengulangan sebanyak 3 kali. Viabilitas pertumbuhan aktivator kompos  dilakukan  dengan  perhitungan  koloni  metode Total Plate  Count (TPC)  [178]  dan  kadar  protein  terlarut  dengan metode  Bradford.  Aktivitas  aktivator  kompos  diuji  dengan pembuatan  pupuk  sampah  pertanian  dan  dianalisis  rasio  C/N. Data yang diperoleh disusun dalam bentuk kurva pertumbuhan,  tabel  analisis  C/N,  dan  kadar  protein  yang dijelaskan secara deskriptif.

## C. Preparasi Konsorisum Aktivator Kompos
Mikroorganisme  yang digunakan merupakan isolat koleksi Laboratorium  Bioteknologi  dan  Mikrobiologi Jurusan Biologi ITS Surabaya yaitu isolat fungi A. niger dan bakteri Rhizobium sp.

## D. Kultur Konsorisum Pada Medium Cair
Bakteri Rhizobium sp.  dikultur  pada  medium  cair NB(Nutrient  Broth).  Sedangkan  fungi A.  niger dikultur  pada medium  PDB  ( Potato  Dextrose  Broth ). Rhizobium sp. diinkubasi selama 24 jam sedangkan fungi A. niger selama 72 jam. Masing-masing kultur dimasukkan ke dalam medium NB 500 mL untuk konsorsium dengan perbandingan 1:1.

## E. Pembuatan Medium Variasi Sumber Nitrogen
Medium yang digunakan adalah M9 minimal medium yang terdiri  dari  komposisi Disodium  Phosphate Heptahydrate 1 gram/L, Monopotassium  Phosphate 1  gram/L, Sodium Chloride 0,5 gram/L, dan variasi sumber nitrogen [18,19].
Masing-masing  medium  dibuat  dengan  variasi  sumber nitrogen  sebanyak  200  mL.  Setiap  sumber  nitrogen  diberi perlakuan  2  konsentrasi  yang  berbeda  yaitu  1,25%  dan  2,5%. Medium  yang  telah  dibuat  dimasukkan  ke  dalam  Erlenmeyer dengan  sumber  nitrogen  yang  berbeda  ( yeast  extract ,  pepton, rumput laut, dan susu skim). Selanjutnya, konsorsium aktivator kompos  diinokulasikan  pada  medium  variasi  sumber  nitrogen yang telah disterilisasi dan diinkubasi selama 72 jam.

## F. Perhitungan Koloni Mikroba
Kontrol  pertumbuhan  mikroba  dilakukan  setiap  7  hari selama  2  bulan.  Metode  pengukuran  pertumbuhan  mikroba secara kuantitatif dengan TPC pada medium NA secara serial
dillution [20].  Masing-masing  kultur  diencerkan  dengan metode serial  dillution untuk  dilakukan  proses  konsorsium sebanyak 3 kali pengenceran [21].
Pengenceran  dengan  metode serial  dillution sebanyak  6 kali.  Aktivator  kompos  pada  setiap  perlakuan  diambil sebanyak 1 mL dan dimasukkan ke dalam tabung reaksi berisi 9 mL akuades steril. Tabung reaksi kemudian divortex hingga larutan  homogen.  Tahap  ini  merupakan  pengenceran  10 -1 . Selanjutnya,  1  mL  larutan  dari  pengenceran  10 -1 diambil, dimasukkan  ke  dalam  tabung  reaksi  lain  yang  berisi  9  mL akuades  steril,  dan  divortex  kembali  hingga  homogen.  Tahap ini  merupakan  pengenceran  10 -2 .  Perlakuan  ini  dilakukan kembali  hingga  pengenceran  10 -6 .  Masing-masing  seri pengenceran  dipipet  sebanyak  0,1  mL  dan  dituangkan  ke dalam  cawan  petri  yang  telah  berisi  medium  padat  dan diratakan  dengan  spatula  drigalsky.  Medium  yang  telah  berisi sampel  kemudian  diinkubasikan  pada  suhu  kamar  (27-28 0 C) selama  48  jam  untuk  dilakukan  perhitungan  koloni  dan  hasil perhitungan dengan satuan Colony Forming unit (CFU).

## G. Pembuatan Kompos dengan Aktivator Kompos
Uji  potensi  degradasi  kompos  dengan  aktivator  kompos variasi  sumber  nitrogen dilakukan dengan pembuatan kompos sampah  pertanian.  Tahapan  awal  adalah  pencampuran  bahan kompos  berupa  sampah  sebanyak  500  gram  dan  ditambahkan aktivator  kompos  dengan  variasi  sumber  nitrogen  sebanyak 150 mL. Campuran kompos diinkubasi secara aerob selama 10 hari  dan  dilakukan  pengukuran  suhu  kompos  dengan menggunakan termometer digital.

## H. Analisis Kandungan C/N
Analisis  kandungan  C-organik  adalah  sampel  diambil  0,5 gram pupuk kompos, kemudian diayak dengan ayakan 0,5 mm dan  dimasukkan  ke  dalam  labu  Erlenmeyer  500  mL.  Larutan K 2 Cr0 7 1  N dimasukkan  ke  dalam  labu  Erlenmeyer  sebanyak 10  mL  dan  20  mL  H 2 SO 4 .  Penentuan  N  total  adalah  dengan metode  Kjehdal  terdiri  dari  tiga  tahapan  yaitu  destruksi, detilasi, dan titrasi. Metode destruksi dilakukan dengan sampel kompos ditimbang sebanyak 2 gram dan dimasukkan ke dalam labu  Kjedahl  dan  ditambahkan  3  gram  selen  serta  30  mL H 2 SO 4 pekat (catatan: untuk blanko tanpa sampel).

## I. Pengukuran Kadar Protein Terlarut
Pengukuran  kadar  protein  terlarut  dalam  penelitian  ini dilakukan  berdasarkan  metode  Bradford  (1967)  berdasarkan kurva standar Bovine Serum Albumin (BSA). Uji kadar protein terlarut  dilakukan  dengan  cara  mereaksikan  sampel  sebanyak 0.1  mL  dengan  reagen  Bradford  sebanyak  5  mL.  Larutan dihomogenkan menggunakan vortex dan diukur absorbansinya menggunakan  spektrofotometer  dengan  panjang  gelombang 595 nm.

## J. Penyusunan, Pengolahan, dan Analisis Data
Data yang didapat merupakan data kualitatif berupa grafik viabilitas  aktivator  kompos,  tabel  kemiringan  kurva  sebagai indikator pertumbuhan aktivator kompos dengan masa simpan selama  2  bulan,  grafik  perubahan  suhu  kompos,  dan  tabel kandungan rasio C/N kompos dengan variasi aktivator kompos yang dianalisis secara deskriptif [23].

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## A. Viabilitas Aktivator Kompos
Viabilitas  aktivator  kompos  diterjemahkan  dalam  tingkat pertumbuhan dan pemanfaatan protein selama masa penyimpanan  aktivator  kompos  yang  tercantum  pada  gambar 4.1.
Gambar 1. Jumlah Sel Aktivator Kompos dan Kadar Protein Terlarut. Keterangan gambar: (a) Konsentrasi medium 1,25% (b) Konsentrasi medium 2,5%.
Pada  gambar  1  tampak  bahwa  tingkat  pertumbuhan aktivator  kompos  selama  2  bulan  penyimpanan  menunjukkan profil  jumlah  sel  dan  kandungan  protein  terlarut  yang  relatif sama  yaitu  antara  5x10 6 CFU/mL  sampai  30x10 6 CFU/mL untuk jumlah sel, serta antara 0,05 mg/mL sampai 0,4 mg/mL untuk kadar protein terlarut.
Jumlah  sel  aktivator  kompos  dan  kadar  protein  terlarut perlakuan  konsentrasi  1,25%  (Gambar  1a)  menunjukkan penurunan  jumlah  sel  dan  penurunan  kadar  protein  terlarut dalam kurun waktu 8 minggu. Penyebab penurunan jumlah sel adalah  kadar  nutrisi  yang  terbatas  dan  kompleksitas  protein yang  cenderung  membutuhkan  waktu  untuk  didegradasi sehingga  sel  mulai  mengurangi  aktivitas  metabolisme  [23]. Aktivator kompos yang tidak mengalami kematian sel tersebut kemungkinannya adalah melakukan pertumbuhan dan melakukan  mekanisme  dormansi  sel.  Aktivator  kompos melakukan  proses  regulasi  dengan  menghasilkan  ppGpp (nukleotida  guanosin  3’-5’bifosfat)  yang  berperan  dalam memodulasi  aktivitas  ribosom  pada  proses  sintesis  protein [12].
Profil pertumbuhan dari beberapa variasi aktivator kompos pada  Gambar  4.1  sukar  untuk  dibedakan.  Oleh  karena  itu untuk  memudahkan  analisis  profil  pertumbuhan  dilakukan penghitungan tingkat kemiringan kurva. Tabel 4.1 menunjukkan  kemiringan  kurva  pertumbuhan  aktivator
kompos.  Kemiringan  kurva  pada  perlakuan  konsentrasi  2,5% lebih rendah dibanding konsentrasi 1,25% dengan kisaran 15- 35.
Tabel 1. Kemiringan Kurva Aktivator Kompos Medium Kemiringan Kurva Pertumbuhan Aktivator Kompos Konsentrasi 1,25% Konsentrasi 2,5% Pepton 38 35 Yeast Extract 19 17 Susu Skim 35 15 Rumput Laut 21 18
Tabel  1  merupakan  hasil  dari  nilai  kemiringan  kurva jumlah aktivator kompos berdasarkan pada korelasi pendekatan  persamaan  linier.  Hasil  tersebut  menunjukkan bahwa tingkat kemiringan kurva yang dapat menentukan masa simpan  aktivator  kompos  berdasarkan  jumlah  penurunan  sel aktivator  kompos.  Nilai  kemiringan  kurva  merepresentasikan medium  sumber  nitrogen  yang  mampu  meningkatkan  masa simpan  aktivator  kompos.  Berdasarkan  hasil  analisis dari segi kemiringan  kurva  pertumbuhan  aktivator  kompos,  segi ekonomi  bahan  dalam  bidang  industri,  dan  efektivitas  dalam pembuatan  medium  maka  rumput  laut  merupakan  medium yang  tepat  dalam  meningkatkan  masa  simpan  aktivator kompos.  Rumput  laut  adalah  bahan  baku  yang  ekonomis  dan melimpah  keberadaannya  dengan  kandungan  nutrisi  lengkap untuk  meningkatkan  masa  simpan  aktivator  kompos  [24]. Medium  rumput  laut  konsentrasi  1,25%  cenderung  memiliki tingkat kemiringan kurva yang relatif rendah yaitu sebesar 21. Hal  inilah  yang  dapat  menjadi  pertimbangan  dalam memanfaatkan  rumput  laut  sebagai  variasi  sumber  nitrogen yang  dapat  meningkatkan  masa  simpan  aktivator  kompos. Rumput laut merupakan medium yang tepat untuk peningkatan masa  simpan  aktivator  kompos  pada  skala  industri  produksi aktivator  kompos.  Rumput  laut  memiliki  kandungan  nutrisi yang  kompleks  untuk  didegradasi  oleh  mikroorganisme. Kompleksitas  struktur  protein  tersebut  dapat  meningkatkan masa simpan aktivator kompos karena akan terjadi penurunan metabolisme sehingga sel mengalami dormansi[12].
Kemampuan  aktivator  kompos  dalam  meningkatkan  masa simpan ini disebabkan karena rumput laut memiliki kandungan karagenan  berupa  rantai  polisakarida  panjang,  kandungan protein,  dan  asam  amino.  Aktivator  kompos  yang  terdiri  dari Rhizobium sp.  dan A.  niger mampu  menghasilkan  berbagai jenis enzim untuk mendegradasi nutrisi . Rhizobium sp. mampu menghasilkan  enzim  protease  untuk  mnedegradasi  kandungan protein  di  dalam  medium  rumput  laut.  Enzim  lain  yang berperan  dalam  proses  metabolisme  protein  yaitu  aspartase yang  mampu  mendegradasi  aspartat  menjadi  fumarat  dan amonia  [25,  26]. A.  niger juga  mampu  menghasilkan  enzim ekstraseluler  berupa  enzim  amilase,  selulase,  dan  enzim protease A.  niger berfungsi  untuk  mendegradasi  protein menjadi  peptida  rantai  pendek  atau  asam  amino  yang digunakan  untuk  memenuhi  suplai  nutrisi  berupa  sumber karbon  dan  nitrogen  yang  tidak  terdapat  di  dalam  sel  [18]. Aktivitas  enzim  protease  semakin  meningkat  apabila kandungan  sumber  nitrogen  juga  meningkat.  Enzim  protease
0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35 - 5 10 15 20 25 30 35 1 2 3 4 5 6 7 8 k a d a r p r o te in m g /m L ju m la h s e l a k ti v a to r k o m p o s ( 10 6 C F U /m L) Waktu (Minggu) pepton yeast extract susu skim rumput laut 0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35 0,4 0,45 0 5 10 15 20 25 30 1 2 3 4 5 6 7 8 K a d a r p r o te in m g /m L ju m la h s e l a k ti v a to r k o m p o s (1 0 6 C F U /m L) Waktu (Minggu) pepton yeast extract susu skim rumput laut a b
mampu meningkatkan aktivitas degradasi substrat berupa yeast extract dan  pepton  [27].  Sekresi  protease  ekstraseluler  terjadi pada fase pertumbuhan stasioner.

## B. Pembuatan Kompos dengan Variasi Aktivator Kompos
Pengamatan  perubahan  suhu  dalam  pembuatan  kompos dengan variasi aktivator kompos tercantum dalam gambar 4.4. Pada  gambar  4.4  terlihat  dua  fase  perubahan  suhu  kompos yaitu  fase  termofilik  dan  fase  mesofilik.  Fase  termofilik  pada gambar  terjadi  pada  hari  ke-1  dengan  peningkatan  suhu kompos pada hari ke-2. Sedangkan fase mesofilik terjadi pada hari ke-3 sampai hari ke-10.
Gambar 2. Hasil Pengukuran Suhu Kompos. Keterangan  gambar:  (a)  Aktivator  Kompos  Variasi  Sumber  Nitrogen Konsentrasi  1,25%  (b)  Aktivator  Kompos  Variasi  Sumber  Nitrogen Konsentrasi 2,5%.
Aktivator  kompos  berperan  dalam  melakukan  degradasi pada  fase  termofilik  berupa  kenaikan  suhu  mencapai  35,5- 36,5  C selama proses composting. Parameter pengukuran suhu selama  proses  komposting  bertujuan  untuk  mengetahui aktivitas  aktivator  kompos  dalam  proses  degradasi  bahan berbasis molekul organik karena suhu merupakan faktor utama yang  mempengaruhi  aktivitas  mikroorganisme  dalam  proses pengomposan  [28].  Suhu  kompos  mengalami  kenaikan  pada fase termofilik karena aktivator kompos mulai aktif melakukan proses degradasi bahan organik [28]. Gambar 2 tampak bahwa suhu  kompos  pada  variasi  aktivator  kompos  memiliki perubahan  suhu  yang  cenderung  sama  dan  tidak  terjadi perbedaan yang signifikan. Proses  komposting  tetap berlangsung  sampai  hari  ke-10  yang  ditunjukkan  dengan penurunan  suhu  kompos  yang  cenderung  stabil  pada  kisaran suhu  32-34,5 0 C.  Proses  aerasi  merupakan  upaya yang penting untuk  mensuplai  kebutuhan  oksigen  bagi  mikroorganisme dalam melakukan respirasi aerob dan mengontrol suhu kompos dengan cara pengadukan.

## C. Rasio C/N Kompos Organik
Hasil pengukuran rasio C/N pada masing-masing perlakuan aktivator  kompos  tercantum  dalam  Tabel  2.  Rasio  C/N tersebut sesuai dengan standar SNI kompos yaitu dengan nilai 10,35/1  -14,15/1.  Berdasarkan  SNI  19-7030-2004  rasio  C/N kompos memiliki nilai minimum dan maksimum sebesar 10:1- 20:1(SNI,  2004).  Sedangkan  rasio  C/N  untuk  ISO  17556 terkait  proses  pembuatan  kompos  adalah  sebesar  10/1  sampai 20/1.
Tabel 2. Rasio C/N Kompos Sampah Pertanian Medium %C %N Rasio C/N Pepton 1,25% 9,68 0,86 11,26 Pepton 2,5% 9,52 0,92 10,35 Yeast Extract 1,25% 8,53 0,68 12,54 Yeast Extract 2,5% 9,41 0,75 12,01 Susu Skim 1,25% 8,91 0,76 11,72 Susu Skim 2,5% 8,93 0.81 11,02 Rumput Laut 1,25% 6,08 0,43 14,15 Rumput Laut 2,5% 6,63 0,48 13,82
Rasio  C/N  merupakan  salah  satu  parameter  kualitas kompos  berdasarkan  tingkat  kematangan  kompos.  Tingkat kematangan kompos diukur berdasarkan penurunan nilai rasio C/N  yang  disebabkan  oleh  aktivitas  degradasi  aktivator kompos  pada  bahan  berbasis  molekul  organik  [29]. Berdasarkan  hasil  pengukuran  rasio  C/N  kompos  dapat diketahui bahwa aktivator kompos dapat melakukan degradasi bahan  organik  dengan  menurunkan  nilai  rasio  C/N.  Proses penurunan  rasio  C/N  juga  dapat  dilakukan  dengan  adanya aerasi yang dilakukan selama proses composting.
Nilai  optimal  rasio  C/N  terdapat  pada  aktivator  kompos medium rumput laut konsentrasi 1,25% yaitu sebesar 14,15/1. Nilai  optimal  rasio  C/N  berkaitan  dengan  aktivitas  aktivator kompos  yang  dapat  memanfaatkan  sumber  karbon  dan nitrogen secara optimal sebagai sumber energi dan komponen pembentukan sel [30].
Nilai  rasio  C/N  dengan  aktivator  kompos  pada  medium pepton ,  yeast  extract, dan  susu  skim  menunjukkan  rasio  C/N yang berada pada batas minimal standar. Nilai rasio C/N yang cukup  rendah  dapat  menyebabkan  pembentukan  amoniak (NH 3 )  yang  dihasilkan  oleh  bakteri  karena  nitrogen  tidak dimanfaatkan oleh aktivator  kompos  sehingga  dapat mengakibatkan  bau  tidak  sedap  dan  kualitas  kompos  dapat berkurang.

## IV. KESIMPULAN
Rumput  laut  merupakan  medium  yang  tepat  dalam meningkatkan masa simpan aktivator kompos. Medium rumput laut  konsentrasi  1,25%  dan  2,5%  cenderung  memiliki  tingkat kemiringan kurva yang relatif rendah yaitu sebesar 21 dan 18. Nilai  kemiringan  yang  rendah  menunjukkan  bahwa  tingkat kematian  sel  setiap  waktu  cenderung  lebih  rendah  karena diduga  sel  mengurangi  aktivitas  metabolisme  dengan melakukan  regulasi  dormansi  sel.  Selain  itu,  nilai  rasio  C/N kompos  dengan  aktivator  pada  medium  rumpt  laut  memiliki
32 32,5 33 33,5 34 34,5 35 35,5 36 0 2 4 6 8 10 12 T em p er a tu r o C Waktu (Hari) Pepton yeast extract susu skim rumput la ut 31,5 32 32,5 33 33,5 34 34,5 35 35,5 36 36,5 37 0 2 4 6 8 10 12 T em p er at u r o C Waktu (Hari) pepton yeast extract susu skim rumput laut a b
nilai rasio C/N yang optimal sebesar 14,15/1. Oleh karena itu, rumput laut merupakan medium yang tepat untuk peningkatan masa  simpan  aktivator  kompos  pada  skala  industri  produksi aktivator kompos.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  A.  W.  Barselia  ucapkan  terima  kasih  kepada Dr.techn.  Endry  Nugroho,  MT.  Selaku  dosen  pembimbing. Ayahanda Sarbini serta Ibunda Siti Astutik atas semangat, doa dan kasih sayangnya. Keluarga Aptenodites patagonicus 2011 dan Biomaterial and Enzyme Research Team atas motivasi dan semangatnya.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]  J.  A.  Alburquerque,  J.  G.  lvez,  G.  Tortosa,  G.  Baddi,  J.  Cegarra, “Evaluation  of  ‘‘alperujo’’  composting  based  on  organic  matter degradation, humification and compost quality”. Journal of Biodegradation  Springer  Science  and  Business  Media  (2009)  20:257– 270.
[2] O. Fourti, N.Jedidi, dan A. Hassen. “Humic substances change during the co-composting  process  of  municipal  solid  wastes  and  sewage  sludge”. Journal of Microbiol Biotechnol (2010) 26:2117–2122.
[3]  A.Kumar,  S.  Gaind,  dan,  L.  Nain.  :Evaluation  of  thermophilic  fungal consortium  for  paddy  straw  composting”.  Journal  of  Biodegradation (2008) 19:395–402.
[4] R. Li, L. Li, R. Huang, Y. Su, X. Mei, B. Shen, dan Q. Shen. “Variations of  culturable  thermophilic  microbe  numbers  and  bacterial  communities during  the  thermophilic  phase  of  composting”.  Journal  of  World Microbiol Biotechnol (2013) 30:1737–1746.
[5]  I.  Petric,  dan  V.  Selimbas.  “Composting  of  poultry  manure  and  wheat straw  in  a  closed  reactor:  optimum  mixture  ratio  and  evolution  of parameters”. Journal of Biodegradation (2007)19:53–63.
[6]  Gharib,  F  .  A.,  M  Oussa,  L.  A.  ,  Dan  Massoud,  Osama.  N.  “Effect  of compost  and  bio-fertilizers  on  growth,  yield  and  essential  oil  of  sweet marjoram  ( Majorana  hortensis )  plant”.  International  journal  Of Agriculture & Biology (2008) 1560–8530.
[7] Partanen, P., Hultman, J., Paulin, L., Auvinen, P. , dan Romantschuk, M. “Bacterial  diversity  at  different  stages  of  the  composting  process”.
Research Article BMC Microbiology (2010) 10-94 <http://www.biomedcentral.com/1471-2180/10/94> [25 Agustus 2015].
[8]  Skinner,  C.  dan  Lin,  S.  J.  “Effects  of  calorie  restriction  on  life  span  of microorganisms”.  Journal of Appl Microbiol Biotechnol  (2010) 88:817– 828.
[9]  Delalibera,  I.  Jr.,  Humbler,  R.  A.,  Hajek,  A.  E.  “Preservation  of  in vitro culture  of  the  mite  pathogenis  fungus Neozygites  tanajoae”. Canadian Journal of Microbiology 8:50 page (2004)579.
[10] Romano,  P.,  “Laboratory  procedures  for  microorganisms”.  Artikel CABRI. (1998) April 2013.
[11]  Uzunova,  T.  D.,  dan  Donev,  T.  “Anabiosis  and  conservation  of microorganisms”.  Journal  of  Culture  Collections  Volume  4,  (2005)  17- 28.
[12]  Mukherjee,T.  K.,  Raghavan,  A.,  dan  Chatterji,  D. “Shortage of nutrient in  bacteria:  The  Stringent  Response”.  Review  Article  Current  Science (1998) Volume 75, No. 7.
[13]  Hubalek,  Z.  “Protectants  used  in  the  cryopreservation  of microorganisms”. Review Journal Cryobiology 46 (2003) 205-229.
[14]  Ooi,  T.  C.,  1  Ariff,  A.  B.,  Halimi,  M.  S.,  dan  Shamsuddin,  Z.  H.
“Growth  kinetics  of  diazotrophic Bacillus  sphaericus UPMB  10 cultured usingdifferent types and concentrations of carbon and nitrogen sources”. Malaysian Journal of Microbiology, Vol 4 (2008) 15- 25.
[15]Uzeh,  R.  E.,  Akinola,  S.  O.,  dan  and  Olatope,  S.  O.  A.  "  Production  of peptone from soya beans ( Glycine max L merr) and African locust beans ( Parkia  biglobosa) ”.  African  Journal  of  Biotechnology  Vol.  5  (18),
(2006) 1684-1686.
[16] Ravimannan, N., Arulanantham, R., Pathmanathan, S., dan Niranjan, K.
“Alternative culture media for fungal growth using different formulation
of  protein  sources”.  Journal  of  Annals  of  Biological  Research,  5  (1) (2014) 36-39.
[17]Masaphy. “Development of Media for Growth and Enumeration of Fungi from  Water”.  Laboratory  Protocols  in  Fungal  Biology:  Current  Methods in Fungal Biology, Fungal Biology (2013).
[18]Braaksma, M., Age, K., Smilde, Marie, Werf, V. D., dan Punt, P. J. “The effect  of  environmental  conditions  on  extracellular  protease  activity  in controlled  fermentations  of Aspergillus  niger ”.  Journal of Microbiology 155, (2009) 3430–3439.
[19]Mujahidy, J. A., “Hassan, M., Rahman, M., dan Rashid, M. Isolation and characterization of Rhizobium spp. and determination of their potency for growth  factor  production”.  International  Research  Journal  of Biotechnology (ISSN: 2141-5153) Vol. 4(7) (2013) 117-123.
[20] Woomer,P. L., Karanja, N., Kisamuli, S. M., Murwira, M., dan Bala, A. “A  revised  manual  for  rhizobium  methods  and  standard  protocols available  on  the  project  website”.  A  revised  manual  for  rhizobium methods and standard protocols available on the project website (2011).
[21]Ching,  H.  Y.,  Ahmed,  O.  H.,  Kassim,  S.,  dan  Majid,  N.  M.  A.  “Co- composting of pineapple leaves and chicken manure slurry”. International Journal Of Recycling of Organic Waste in Agriculture (2013) 2:23.
[22]Neeraj,  Gaurav,  S.S.,  Chatterjee,  S.C.,  Sachin,  dan  Chandra,  M.
“Efficient  Nitrogen  Fixing  Rhizobial  Isolate  Infecting  Vigna  radiata  l. Asian Journal of Agricultural Sciences” 1(2): (2009) 62-65.
[23]Maisonneuve,  E.  dan  Gerdes,  K.  “Molecular  mechanisms  underlying bacterial persisters”. Leading Edge Review Cell (2014) 157.
[24]Matanjun,  P.,  Mohamed,  S.,  Mustapha,  N.  M.,  dan  Muhammad,  K. “Nutrient  content  of  tropical  edible  seaweeds, Eucheuma  cottonii, Caulerpa  lentillifera and Sargassum  polycystum”. Journal  of  Appl Phycol (2008) 21:75–80.
[25]Poole,  P.  dan  Allaway,  D.  “Carbon  and  nitrogen  metabolism  in Rhizobium. advances in microbial physiology”. Volume (2000) 43.
[26]  Dunn,  M.  F.  “Key  roles  of  microsymbiont  amino  acid  metabolism  in rhizobia-legume  interactions”.  Crit  Rev  Microbiol,  Early  Online  (2014) 1–41.
[27]  Chancharoonpong,  C.,  Huenjit,  Hsieh,  P.  C.,  dan  Sheu,  S.  C.  “Enzyme production  and  growth  of  Aspergillus  oryzae  S.  On  soybean  koji fermentation”. APCBEE (Procedia 2012) 000–000.
[28]  Barakah,  F.,  Radwan,  S.,  dan  Aziz,  R.  “Using  Biotechnology  in  Recy cling  Agricultural  Waste  for  Sustainable  Agriculture  and  Environmental Protection”. Int.J.Curr.Microbiol.App.Sci 2 (12 : (2013) 446 – 459.
[29]  Tripetchkul,  S.,  Pundee,  K.,  Koonsrisuk,  S.,  dan  Akeprathumchai,  S. 2012.  “Co-composting of coir pith and cow manure: initial C/N ratio vs physico-chemical  changes”.  International  Journal  Of  Recycling  of Organic Waste in Agriculture (2012) 1:15.
[30]  Sadik,  M.W.,  El  Shaer,  H.M.,  Yakot,  H.  M.  “Recycling  of  agriculture and  animal  farm  wastes  into  compost  using  compost  activator  in  Saudi Arabia”. J. Int. Environmental Application & Science, Vol. 5 (3): (2010) 397-403.