JFFI. 2019; 6(2) 353-359 www.jurnal.farmasi.umi.ac.id/index.php/fitofarmakaindonesia

## AKTIVITAS ANTIJAMUR EKSTRAK ETANOL DAUN KESUM (Polygonum minus Huds.) TERHADAP Microsporum canis
Vica Vionita Rosalim 1 , Syarifah Nurul Yanti Rizki Syahab Asseggaf 2 , Diana Natalia 3 *, Mahyarudin 4
1 Prodi Kedokteran, Fakultas Kedokteran, Universitas Tanjungpura
2 Departemen Farmakologi, Fakultas Kedokteran, Universitas Tanjungpura
3 Departemen Parasitologi, Fakultas Kedokteran, Universitas Tanjungpura
4 Departemen Mikrobiologi, Fakultas Kedokteran, Universitas Tanjungpura
* diananatalia@medical.untan.ac.id
Submission Date: 13-02-2019;   Review Completed: 02-08-2019; Accepted Date: 02-08-2019

## ABSTRACT
Dermatophytosis  is  a  fungal  infection  caused  by  one  of  the  superfixial  mycoses,  namely  dermatophytes. Microsporum  canis  is  one  of  the  dermatophyte  species  that  can  infect  hair,  skin,  leg  and  thighs.  Kesum  plants (Polygonum  minus Huds. )  are  endemic  plants  of West  Kalimantan  that  have  many  bioactive  compounds  from  the roots to the leaves. The leaves of kesum contain secondary metabolites which can inhibit fungi growth. This research had  purpose  to  know  the  antifungal  activity  of  kesum  leaves’  ethanol  extracts  on  Microsporum  canis.  The  kesum leaves’ extraction used maceration method with 96% ethanol as a solvent. Analysis secondary matbolites of kesum leaves’ secondary metabolites used tube test and thin layer chromatography. Antifungal activity test used Kirby-Bauer disk diffusion method with 5 extract concentration variantions i.e. 80, 40%, 20%, 10%, and 5%. Itraconazole 8 µg/disk was used as a positive control and DMSO 10% was used as a negative control. Kesum leaves’ ethanol extract was obtained saponin, flavonoid, alkaloid, therpenoid, and phenol. Ethanol extracts of kesum leaves did not create zone of  inhibition against  Microsporum canis. Ethanol extracts of kesum leaves didn’t have antifungal activity against Microsporum canis.
Keywords: Kesum; antifungal; Microsporum canis

## I. PENDAHULUAN
Lebih dari 20-25% populasi dunia mengalami  mikosis  superfisial.  Mikosis  superfisial adalah  penyakit  jamur  di  lapisan  permukaan  kulit (stratum  korneum,  rambut  dan  kuku).  Mikosis superfisial  yang  paling  dominan  terjadi  adalah dermatofitosis,  yaitu  infeksi  jamur  yang  disebabkan oleh jamur golongan dermatofita (Sutanto et al, 2008; Vena  et  al,  2012;  Widaty  dan  Budimulja,  2016). Insiden  dermatofitosis  di  Indonesia  cukup  banyak, yaitu  sebesar  52%  dari  seluruh  dermatomikosis (Sutanto et al, 2008; Yossela, 2015). Hal ini didukung oleh  suhu  dan  kelembapan  Indonesia  yang  tinggi (Sutanto  et  al,  2008;  Kanti  dan  Rahmanisa,  2014). Data  dari  Unit  Penyakit  Kulit  dan  Kelamin  RS.  dr. Cipto Mangunkusumo
mencatat bahwa
dermatofitosis  menempati  peringkat  1  dalam  kasus mikosis superfisial (Bertus et al, 2014).
Satu  di  antara  penyebab  dermatofitosis adalah Microsporum  canis (Sutanto  et  al,  2008).
Microsporum  canis merupakan  dermatofita  zoofilik
yaitu,  spesies  dermatofit  yang  berasal  dari  hewan terutama kucing dan anjing (Widaty dan Budimulja, 2016). Microsporum canis memiliki cara penyebaran yang  beragam  yaitu  melalui  hewan,  manusia, penggunaan  barang  pribadi  bersama  (Sutanto  et  al, 2008;  Kanti  dan  Rahmanisa,  2014). Data  Poliklinik Ilmu Kesehatan Kulit dan Kelamin (IKKK) RSUPN dr.  Cipto  Mangunkusumo  (RSCM)  Jakarta  pada tahun  2005  sampai  2010  menyatakan  terdapat  23 kasus  tinea  kapitis  yang  mana  sebanyak  56,525 sampel  berhasil  dikultur  dan  ditemukan  spesies M. canis sebanyak 69,23% (Sari et al, 2012).
Kematian yang disebabkan infeksi dermatofitosis  jarang  terjadi  namun  yang  menjadi masalah  adalah  menurunnya  kualitas  hidup  pasien (Sutanto  et  al,  2008;  Siregar,  2014). Penanganan dermatofitosis  adalah  dengan  memperbaiki  pola hidup  bersih  dan  sehat  serta  terapi  medikamentosa berupa  obat  antifungi.  Namun  perlu  kita  ketahui bahwa beberapa obat antifungi memiliki efek toksik
serta jamur mulai mengalami resistensi terhadap obat (Katzung, 2015).
Kekayaan  alam  Indonesia  yang  telah  lama digunakan  sebagai  obat  oleh  masyarakat  yaitu tanaman  kesum  ( Polygonum  minus Huds),  yang merupakan salah satu tanaman endemik Kalimantan Barat (Fitriana et al, 2014). Daun kesum telah dikenal sebagai  obat  tradisional,  penyedap  masakan,  dan bahan  parfum.  Selain  itu  adanya  efek  sebagai antioksidan,  antibakteri,  antifungal,  antiulserasi, memperbaiki  kerusakan  paru,  dan  pencegah  efek samping  obat  kemoterapi  juga  telah  diteliti  (Syaiful et  al,  2015;  Imelda,  2013;  Michael  et  al,  2013; Wibowo  et  al,  2013).  Kemudian  studi  mengenai famili  Polygonaceae  yaitu Polygonum  aviculareae (akar)  dan Polygonum  equistiforme (bagian  atas) sebagai  antijamur  pada Microsporum  canis dan Trichophyton  rubrum menunjukkan  bahwa  dua tanaman  tersebut  memiliki  aktivitas  antijamur terhadap kedua jamur uji (Maoz dan Neeman, 1998).
Polygonum  minus Huds.  mengandung senyawa  golongan  fenolik , flavonoid,  alkaloid, terpenoid-steroid,  saponin  dan  tanin  yang  dapat memiliki bioaktivitas serta efek antijamur (Fitriana et al,  2014;  Rita  et  al,  2013;  Nanasombaat  dan Teckchuen,  2009).  Kandungan  senyawa  fenoliknya berupa  flavonoid,  asam  galat,  rutin,  kuersetin, stibene,  dan  asam koumarik  (Qader  et  al,  2012; Nkuete  et  al,  2015;  Vikram  et  al,  2014).  Senyawa flavonoid  daun  kesum  adalah  berupa  kalkon, flavonon  dan  metil  flavonol  (Nkuete  et  al,  2015; Urones  et  al,  1990).  Daun  kesum  diduga  memiliki flavonoid  yang  sama  dengan  daun  kesum  spesies Thailand  ( Polygonum  odoratum )  meliputi  rutin, katekin, kuarsetin, isohamnetin, dan kaempferol (Rita et  al,  2013;  Nanasombaat  dan  Teckchuen,  2009). Studi  Johnny  dkk  menunjukkan  ekstrak  aseton P. minus memiliki  aktivitas  antijamur  terhadap Colletotrichum capsici (Jonny et al, 2011).
Berdasarkan  urainan  di  atas,  penulis  ingin melakukan  penelitian  mengenai  aktivitas  antijamur ekstrak etanol daun kesum ( Polygonum minus Huds.) terhadap Microsporum canis.

## II. METODE PENELITIAN A. Alat dan Bahan
Alat  yang  digunakan  pada  penelitian  ini adalah wadah kaca, lemari pendingin, sendok tanduk, bejana  maserasi, rotary  evaporator ,  timbangan analitik,  sendok stainless ,  oven,  inkubator,  krusibel porselen,  desikator,  corong  kaca,  pinset, autoclave , gelas ukur, erlenmeyer, gelas beker, cawan penguap, tabung  reaksi,  batang  pengaduk,  cawan  petri,  kaca objek, kaca penutup, pipet tetes, pipet Pasteur, jangka sorong,  jarum  ose,  mikroskop,  kompor  listrik, blender, dan pembakar Bunsen.
Bahan  yang  digunakan  pada  penelitian  ini adalah dengan ekstrak etanol daun kesum ( Polygonum minus Huds.) yang diujikan pada jamur Microsporum canis , aluminium  foil ,  kertas  saring,  tissue,  plastik tahan  panas,  kapas,  karet,  parafilm,  kertas  HVS, itrakonazol,  akuades,  etanol  96%,  spiritus,  asam klorida  (HCl)  pekat,  eter,  n-heksana-etil  asetat,  besi (III)  klorida  (FeCl 3 ),  serium  sulfat,  larutan Liebermann-burchard,  dragensorff,  Agar  Sabouraud Dekstrosa (ASD), DMSO, dan pewarna lactophenol cotton blue .

## B. Pengambilan dan Penyiapan Sampel
Sampel berasal dari daun kesum ( Polygonum minus Huds.) segar yang diperoleh dari Sungai  Jawi  (Pontianak).  Pengambilan  sampel tanaman  dilakukan  pagi  hari. Tanaman  daun  kesum ( Polygonum  minus Huds.)  yang  telah  dideterminasi, kemudian  disortasi  dari  bahan-bahan  pengotor. Kemudian  daun  kesum  ( Polygonum  minus Huds.) dicuci  dengan  air  mengalir  hingga  bersih  dan dikeringkan  hingga  kering  dengan  cara  diangin- anginkan  (selama  ±  2  minggu).  Daun  kesum ( Polygonum  minus Huds.)  yang  telah  kering, dihaluskan  dengan  menggunakan  blender  hingga menjadi  serbuk  dengan  ukurun  derajat  kehalusan serbuk  simplisia  yang  sesuai.  Serbuk  simplisia  yang ada  disimpan  dalam  wadah  kering  tertutup  rapat dalam ruangan terlindung dari cahaya matahari.

## C. Ekstraksi Sampel
Serbuk  simplisia  daun  kesum  ( Polygonum minus Huds.)  sebanyak  500  mg  dimaserasi  dengan menggunakan  etanol  96%  selama  72  jam  dan  pada tiap  12  jam  sekali-kali  dilakukan  pengadukan.  Hasil maserasi  yang  sudah  direndam  24  jam  disaring dengan  dan  selanjutnya  residu  kembali  dimaserasi kembali  selama  24  jam.  Filtrat  daun  kesum ( Polygonum minus Huds.) yang diperoleh, disatukan, dan dipekatkan dengan menggunakan rotary evaporator pada  suhu  40º-50ºC  hingga  diperoleh ekstrak kental.

## D. Analisis Fitokimia
Analisis  fitokimia  dalam  penelitian  ini menguji  kandungan  senyawa  metabolit  alkaloid, saponin, fenol, flavonoid dan terpenoid menggunakan metode uji tabung dan uji Kromatografi  Lapis  Tipis  (KLT)  (Marliana et  al , 2005).

## E. Penyiapan Jamur Uji
Isolat jamur Microsporum canis berasal dari Laboratorium  Parasitologi  Fakultas  Kedokteran Universitas  Indonesia.  Identifikasi  karakteristik jamur  uji  dilakukan  secara  makroskopis  dan
mikroskopis (Indrarjulianto  et  al,  2016; Meiliawati dan  Kuswytasari,  2013).  Pembuatan  suspensi  jamur dilakukan secara aseptis dengan cara uji pada  media peremajaan  yang  berumur  24  jam  diambil  dengan menggunakan jarum ose dan disuspensikan ke dalam tabung berisi  5  mL  akuades  steril  hingga  homogen (Dalynn Biologicals, 2010).

## F. Uji Aktivitas Antijamur Ekstrak Daun Kesum terhadap Microsporum canis
Pengujian daya hambat ekstrak etanol daun kesum ( Polygonum minus Huds.) terhadap pertumbuhan  Microsporum  canis  dilakukan  dengan
metode  difusi  cakram  berdiameter  5  mm.  Setelah inokulum  sudah  dioleskan  pada  permukaan  media ASD, selanjutnya menempatkan kertas cakram yang telah  diberikan  sampel  ekstrak,  kontrol  positif itrakonazol  8  µg/disk,  dan  kontrol  negatif  akuades selama  15  menit  pada  permukaan  lempeng  ASD. Masing-masing  kertas  cakram  sebanyak  4  buah diletakkan di atas  media  Agar Sabouraud Dekstrosa tersebut  dengan  jarak tiap cakram sebesar 4 cm dan dari tepi lempeng sebesar 2 cm terlihat pada Gambar 1  (Tortora et  al ,  2010;  CLSI,  2012).  Kemudian diinkubasi pada suhu 37 o C selama 18-24 jam.
Gambar 1. Letak Cakram pada Media Uji Antifungi
Parameter yang diukur adalah zona hambat yang  terbentuk  pada  tepi  daerah  kertas  cakram (Tortora  et  al,  2010).  Zona  hambat  tersebut  diukur dengan jangka sorong. Setelah itu zona hambat yang
terbentuk  dibandingkan  dengan  diameter  zona hambat  kontrol  positif.  Adapun  klasifikasi hambatan dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Klasifikasi Respon Hambatan Pertumbuhan Jamur (CLSI, 2012; Kandoli et al , 2016)
Diameter Zona Bening Respon Hambatan Pertumbuhan 20 mm Sangat Kuat 11-20 mm Kuat 5-10 mm Sedang 0-4 mm Lemah

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil Penelitian Analisis Fitokimia Hasil  analisis  fitokimia  pada  penelitian menunjukkan ekstrak etanol daun kesum mengandung  senyawa  metabolit  sekunder  berupa golongan saponin, flavonoid, alkaloid, terpenoid dan fenol, dapat dilihat pada gambar 2.

## Uji Aktivitas Antifungi
Uji  aktivitas  antifungi  pada  penelitian  ini menggunakan  5  variasi  konsentrasi  ekstrak  etanol daun  kesum  yaitu  5%,  10%,  20%,  40%,  dan  80%.
Adanya  aktivitas  antifungi  ditunjukkan  dengan terbentuknya  zona  hambat  di  sekitar  kertas  cakram yang  sebelumnya  telah  direndam  dalam  ekstrak etanol  daun  kesum  selama  15  menit.  Hasil  uji aktivitas  antifungi  ekstrak  etanol  daun  kesum terhadap Microsporum  canis setelah  diinkubasi selama  empat  belas  hari  pada  suhu  37 o C  dengan variasi  konsentrasi  ekstrak  etanol  daun  kesum  5%, 10%, 20%, 40%, dan 80% tidak menunjukkan adanya zona  hambat,  begitu  pula  dengan  kontrol  negatif. Sedangkan  pada  kontrol  positif  didapatkan  zona
Keterangan:
A (1-4): Kertas cakram B: Cawan petri 1 3 2 4 2 cm 4 cm A B
hambat sebesar 50 mm. Data dapat dilihat pada tabel 2.
Tabel 2. Hasil Uji Aktivitas Antifungi Ekstrak Etanol Daun Kesum ( Polygonum minus Huds. ) terhadap Pertumbuhan Microsporum canis
No. Konsentrasi Diameter Zona Hambat (mm) Rata-rata (mm) Pengulangan ke- I II III IV 1. 80% 0 0 0 0 0 2. 40% 0 0 0 0 0 3. 20% 0 0 0 0 0 4. 10% 0 0 0 0 0 5. 5% 0 0 0 0 0 6. Kontrol (-) 0 0 0 0 0 7. Kontrol (+) 50 50 50 50 50 Keterangan: 0 = tidak terdapat zona hambat
Gambar 2. Hasil Analisis Fitokimia Ekstrak Etanol Daun Kesum: (A) Saponin, (B) Flavonoid, (C) Alkaloid, (D) Terpenoid, dan (E) Fenol.

## Pembahasan
Uji  aktivitas  antijamur  ekstrak  etanol  daun kesum  pada  penelitian  ini  menggunakan  metode difusi  cakram Kirby-Bauer (Rex et  al ,  2009).  Uji aktivitas  antijamur  ini  bertujuan  untuk  mengetahui aktivitas  antijamur  ekstrak  etanol  daun  kesum terhadap  jamur Microsporum  canis .  Pada  penelitian ini  terdapat  5  kelompok  perlakuan  dengan  variasi komponen  ekstrak  etanol  daun  kesum  80%,  40%, 20%,  10%,  dan  5%  serta  dua  kontrol  yaitu  kontrol positif  menggunakan  itrakonazol  8  µg/disk  dan kontrol  negatif  menggunakan  DMSO  10%.  Setelah inkubasi  selama  14  hari  dengan  suhu  37ºC,  kontrol positif  menunjukkan  adanya  zona  hambat  di  sekitar cakram  sebesar  50  mm.  Pada  kontrol  negatif  tidak menunjukkan adanya zona hambat yang terbentuk di sekitar kertas cakram. Uji aktivitas antijamur dengan menggunakan  ekstrak  etanol  daun  kesum  dengan variasi  konsentrasi  80%,  40%,  20%,  10%,  dan  5% didapatkan  hasil  tidak  terbentuknya  zona  hambat  di sekitar  kertas  cakram  yang  menunjukkan  tidak adanya  aktivitas  antijamur  terhadap  jamur  uji
Microsporum canis . Hasil negatif pada penelitian ini dapat dipengaruhi oleh berbagai faktor, seperti faktor jamur uji dan faktor obat.
Microsporum  canis memiliki  dinding  sel tebal dan kasar serta fase pertumbuhan  yang  lambat (Shalaby et al , 2016; Soltys, 2015). Dinding sel jamur terdiri  dari  lapisan  multipel  (mannoprotein  dan glukan  80%,  serta  kitin  2%).  Mannoprotein  secara predominan  mengekspresikan  permukaan  eksternal. Susunan  utama  membran  plasma  jamur  adalah ergosterol.  Ergosterol  memilki  peran  penting  pada pertahanan  sel  jamur.  Peran  ergosterol  adalah biosintesis,  pengambilan  dan  pelepasan  bahan, menghasilkan rangkaian karbohidrat, penyalur sinyal dari  lingkungan,  serta  sebagai  tempat  penyimpanan enzim dinding sel. Faktor ini mempengaruhi seberapa efektif  permeabilitas  obat  ke  dalam  sel  jamur, semakin  tebal  dinding  sel  semakin  sulit  suatu senyawa  masuk  ke  dalam  sel  (Nigam,  2015). Pertumbuhan Microsporum canis yang  lambat  juga berpengaruh  pada  pengobatan.  Pertumbuhan  lambat menunjukkan replikasi sel yang lambat atau adanyaa
B C A D E d d
sel  yang dorman, sehingga hal  ini  menyebabkan sel jamur  tidak  dapat  dibunuh  oleh  zat  antijamur (Cannon et al , 2009). Sedangkan jamur Trichophyton mentagrophytes memiliki  dinding  sel  tipis  dan  fase pertumbuhannya
sangat
cepat, sehingga permeabilitas dan transport obat  ke dalam  sel  jamur akan lebih mudah (Soltys, 1963).
Banyak obat antifungi yang memiliki target kerja pada ergosterol,  yaitu pada  ikatan dan sintesis ergosterol.  Obat  akan  menyebabkan  perubahan struktur  pada  membran  lipid  jamur  sehingga  obat akan lebih mudah dipenetrasi oleh sel jamur. Namun ergosterol memiliki mekanisme untuk pertahanan sel jamur.  Ergosterol  berfungsi  sebagai  bioregulator fluiditas membran dan integritas membran dalam sel jamur. Perubahan sterol dan/atau komposisi fosfolipid  dari  membran  sel  jamur  dan  fluiditas membran dapat berakibat pada penurunan penyerapan  obat  oleh  sel  jamur.  Akumulasi  obat secara intraseluler yang berkurang dapat juga terjadi karena peningkatan transpor aktif obat keluar dari sel (Nigam, 2015).
Selain faktor ketebalan dinding sel dan fase pertumbuhan,  terdapat  beberapa  faktor  lain  yang dapat  menyebabkan  tidak  efektifnya  tanaman  uji terhadap Microsporum canis ; yaitu  (1) enzim target diproduksi  berlebihan,  sehingga  senyawa  antijamur tidak  dapat  menghambat  reaksi  biokimia  secara lengkap,  (2)  target  senyawa  antijamur  diubah sehingga  tidak  dapat  berikatan  dengan  target,  (3) penetrasi  senyawa  antijamur  dicegah  masuk  oleh membran  sel  atau  dinding  sel;  (4)  sel  memiliki mekanisme  untuk  mengompensasi  hilangnya  fungsi karena aktivitas senyawa antijamur (Nigam, 2015).
Obat itrakonazol yang merupakan golongan triazol  memiliki  situs  target  yaitu  biosintesis ergosterol  (inhibisi  Erg11p)  dengan  target  sitokrom P450,  14α-Lanosterol,  Demethylase  (Nigam,  2015; Cannon et  al ,  2009).  Pada  penelitian  ini  itakonazol menunjukkan aktivitas antijamur yang baik terhadap
Microsporum canis . Pada beberapa studi menunjukkan itrakonazol memiliki aktivitas antijamur  yang  baik  terhadap Microsporum  canis . Hal  ini  karena Microsporum canis masih  sensitif terhadap itrakonazol dan belum mengalami resistensi terhadap itrakonazol.
Berdasarkan  hasil  uji  aktivitas  antijamur penelitian ini menunjukkan bahwa senyawa golongan saponin,  flavonoid,  alkaloid,  terpenoid,  dan  fenol yang terdapat  pada ekstrak etanol daun kesum tidak memiliki  potensi  sebagai  antijamur  terhadap Microsporum canis . Setiap senyawa yang terdapat di dalam  tanaman  memiliki  aktivitas  yang  berbeda- beda, walaupun  merupakan  senyawa  satu golongan. Beberapa  penelitian  menyebutkan  bahwa  terpenoid merupakan  senyawa  utama  yang  berperan  dalam
aktivitas  antijamur  terhadap  jamur  dermatofita. Senyawa  terpen  yang  utama  dalam  aktivitas antijamur terhadap dermatofita adalah monoterpenoid  dan  sesquiterpen  (Trakranrungsie, 2011).  Pada  beberapa  penelitian  yang  menguji aktivitas  antijamur  terhadap  dermatofita,  salah  satu senyawa  yang  diduga  berperan  adalah  flavonoid, yaitu isoflavon (Vila et al , 2013). Golongan alkaloid yang memiliki aktivitas antimikrob adalah cryptolepine .  Namun  pada  penelitian  ini  senyawa golongan  terpenoid,  flavonoid,  alkaloid,  fenol  dan saponin  ekstrak  etanol  daun  kesum  tidak  memiliki aktivitas  antijamur.  Setiap  golongan  senyawa memiliki  jenis  dan  gugus  yang  berbeda,  sehingga aktivitas  yang  dimiliki  akan  berbeda  dan  memiliki kekuatan aktivitas antimikrob yang berbeda (Kurniawan, 2015).

## IV. KESIMPULAN
Ekstrak  etanol  daun  kesum  ( Polygounum minus Huds.)  tidak  memiliki  aktivitas  antifungi terhadap Microsporum  canis sehingga  konsentrasi efektif tidak dapat ditentukan.

## DAFTAR PUSTAKA
Bertus  N.  V.  P.,  H.  E.  J.  Pandaleke,  dan  G.  M.
Kapantow.  2015.  Profil  Dermatofitosis  di Poliklinik  Kulit  dan  Kelamin  RSUP  Prof. Dr. R. D. Kandao Manado Periode Januari- Desember  2012. Jurnal  e-Clinic 3(2):  731- 4.
Cannon R. D., E. Lamping, A. R. Holmes, K. Niimi, P. V.  Baret, M. V.  Keniya, K.  Tanabe, M. dan  Niimi,  A.  2009.  Goffeau,  B.  C.  Monk.
Efflux-mediated Antifungal Drug
Resistance. Clinical  Microbiology  Reviews 22(2): 291-321.
Clinical  and  Laboratory  Standards  Institute.  2012.
Performance  Standards  for  Antimicrobial Testing: Twenty-second Informational
Supplement. CLSI. USA. Dalynn  Biologicals.  2014. McFarland  Standard. Dalynn Biologicals. Canada Departemen  Kesehatan  Republik  Indonesia.  2014.
Farmakope  Indonesia  V .  Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Jakarta. Fitriana  N.,  Rumayati,  N.  Sumartini,  A.  Jayuska,
Syaiful,  dan  Harliya.  2014.  Formulasi Serbuk Flavour Makanan dari Minyak Atsiri Tanaman  Kesum  ( Polygonum  minus Huds) sebagai Penyedap Makanan. JATP 3(1): 12- 5.
Johnny  L.,  U.  K.  Yusuf,  dan  R.  Nulit.  2011.
Antifungal  Activity  Of  Selected  Plant
Leaves  Crude  Extracts  Against  A  Pepper Anthracnose Fungus,
Colletotrichum
capsici (Sydow) Butler And Bisby (Ascomycota: Phyllachorales). AJB 10(20): 4157-65.
Imelda F.  2013.  Deteksi Senyawa Antibakteri Daun
Kesum  Secara  KLT-Bioautografi  dan Pengaruhnya terhadap Membran Escherichia coli dan Staphylococcus aureus . Tesis . Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor. Bogor
Indrarjulianto S., Yanuartono, P. Hary, W. Puspa, dan Y.  I.  S.  Gerson.  2016.  Isolasi  dan Identifikasi Microsporum canis dari Anjing Penderita  Dermatofitosis  di  Yogjakarta. Jurnal Veteriner 15(2): 212-6.
Kandoli F., J. Abijulu, dan M. Leman. 2016. Uji Daya Hambat  Ekstrak  Daun  Durian  ( Durio z ybethinus ) terhadap Pertumbuhan Candida albicans Secara In Vitro. Pharmacon Jurnal Ilmiah Farmasi 5(1): 46-52.
Kanti  E.  A.  A.  dan  S.  Rahmanisa.  2014.  Tinea Corporiwith  Grade  Obesity  In  Women Domestic  Workers  Age  34  Years. Medula 2(4): 24-32.
Katzung B. G. 2015. Farmakologi Dasar dan Klinik . Edisi  13.  Penerbit  Buku  Kedokteran  EGC. Jakarta.
Kurniawan D. 2015. Uji Aktivitas Antijamur Ekstrak
Etanol  Daun  Kelor  ( Moringa oleifera Lamk.) terhadap Candida albicans Secara In Vitro. Jurnal  Mahasiswa  PSPD  FK Universitas Tanjungpura 3(1): [21p].
Maoz M. dan I. Neeman. 1998. Antimicrobial Effects
Of  Aqueous  Plant  Extracts  On  The  Fungi Microsporum canis and Trichophyton rubrum and  On  Three  Bacterial  Species. Letters in Applied Microbiology 24: 61-3.
Marliana  S.  D.,  V.  Suryanti,  dan  Suyono.  2005.
Skrining Fitokimia dan Analisis Kromatografi Lapis Tipis Komponen Kimia
Buah  Labu  Siam  ( Sechium  edule Jacq. Swartz.)  dalam  Ekstrak  Etanol. Biofarmasi 3(1):26-31.
Meiliawati  D.  dan  N.  D.  2013.  Kuswytasari.  Isolasi dan Identifikasi Jamur Kayu Lignolitik dari Vegetasi Mangrove Wonorejo. Jurnal Sains dan Seni Pomits 2(1): 16-19.
Michael,  I.  Kusharyanti,  dan  Isnindar.  2013.
Pengaruh  Ekstrak  Metanol  Daun  Kesum ( Polygonum minus Huds.) terhadap
Peningkatan  Kadar  Kreatinin  dan  Ureum Serum Tikus Putih Galur Wistar Terinduksi Sisplatin. Jurnal  Mahasiswa  Farmasi
Fakultas Kedokteran UNTAN 1(1): [9p]. Nanasombaat  S.  dan  N.  Teckchuen.  2009. Antimicrobial,  Antioxidant  and  anticancer Activities  Of  Thai  Local  Vegetables.
Journal of Medicinal Plants Research 3(5): 443-9.
Nigam P. K.. 2015. Antifungal Drugs and Resistance: Current Concepts. Our Dermatol  Online 2: 212-21.
Nkuete A. H. L., L. Migliolo, H. K. Wabo, P. Tane, dan  O.  L.  Franco.  2015.  Evaluation  Of Multiple  Functions  Of  Polygonum  Genus Compounds. European Journal of
Medicinal Plants 6(1): 1-16.
Qader S. W., M. A. Abdulla, L. S. Chua, H. M. Sirat, dan  S.  Hamdan.  2012.  Pharmacological Mechanisms  Underlying  Gastroprotective Activities  Of  The  Fractions  Obtained  from Polygonum  minus in  Sprague  Dawley  rats . Int J Mol Sci 13: 1481-1496.
Rex  J.  H.,  M.  A.  Ghannoum,  B.  D.  Alexander,  D. Andes,  S.  D.  Brown,  D.  J.    Diekema,  A. Espinel-Ingroff,  dan  C.  L.  Fowler.  2009. Method  for  Antifungal  Disk  Diffusion Susceptibility  Testing  Of  Yeasts  Approved Guideline.  Second  edition.  Clinical  and Laboratory Standards Institute. USA. Rita, I. Kusharyanti, dan S. Wahdaningsih. 2013. Uji Aktivitas  Nefroprotektif  Fraksi  Metanol Danus  Kesum  ( Polygonum  minus Huds.) pada  Tikus  Jantan  Galur  Wistas  ( Rattus norvegicus )  Yang  Diinduksi  Cisplatin. Jurnal Mahasiswa Farmasi Fakultas Kedokteran UNTAN 1(1): [10p].
Sari A. B., S. Widaty, K. Bramono, E. Miranda, dan
M. Ganjardani. 2012. Laporan Kasus: Tinea Kapitis  di  Poliklinik  Kulit  Dan  Kelamin RSUPN  Dr  Cipto  Mangunkusumo  Jakarta Periode  Tahun  2005  –  2010. MDVI 39(3):
113-7.
Shalaby M. F. M., A. N. El-din, dan M. A. El-Hamd. 2016. Isolation,  Identification, and In Vitro Antifungi Susceptibility Testing Of
Dermatophytees  From  Clinical  Samples  At Sohag  University  Hospital  in  Egypt. Electronic Physician 8(6): 2557-67. Siregar R. S. 2014. Atlas Berwarna Saripati Penyakit Kulit .  Penerbit  Buku  Kedokteran  EGC. Jakarta. Soltys  M.  A.  1963. Bacteria  and  Fungi  Pathogenic To Man and Animals . Bailliere Tindall and Cox. London.
Sutanto  I.,  I.  S.  Ismid,  P.  K.  Sjarifuddin,  dan  S.
Sungkar.  2008.  Buku  Ajar:  Parasitologi Kedokteran. Edisi  Keempat.  Balai  Penerbit FKUI. Jakarta.
Syaiful A. J., A. Jayuska, dan Harlia. 2015. Pengaruh
Waktu Distilasi terhadap Komponen Minyak Atsiri Pada Daun Kesum ( Polygonum minus Huds.). JJK 4(1): 18-23.
Tortora  G.  J.,  B.  R.  Funke,  dan  C.  L.  2010.  Case. Microbiology: an introduction. 10th edition. Pearson. US. Trakranrungsie N. 2011. Plant Derived Antifungals- trends  and  Potential  Applications  In Veterinary  Medicine:  A  Mini-Review.  In: Science against microbial pathogens: communicating current research and technological  advances.  Ed.  A.  Mendez- Vilas. Formatex  Research  Center 2:  1195- 1204. Urones  J.  G.,  I.  S.  Marcos,  B.  G.  Perez,  dan  P.  B. Barcala.  1999  Flavonoid  from Polygonum minus . Phytochemistry 29(11): 3687-9. Vena  G.  A.,  P.  Chieco,  F.  Posa,  A.  Garotalo,  A. Bosco, dan N. 2012. Cassano. Epidemiology
Of Dermatophytoses:
Retrospective
Analysis From 2005-2010 And Comparison
With  Previous  Data  From  1975. New Microbiologica 35: 207-13. Vikram P., K. K. Chiruvella, I. H. A. Ripain, dan M. Arifullah.  2014.  A  Recent  Review  On Phytochemical Constituents And Medicinal Properties  Of  Kesum  ( Polygonum minus Huds.). Asian Pac J Trop Biomed 4(6): 430- 5. Vila  R.,  B.  Freixa,  dan  S.  Canigueral.  2013. Antifungal Compounds From Plants. Recent Advances  in  Pharmaceutical  Sciences  III p23-43. Wibowo M. A., M. A. Widodo, B. B. Purnomo, dan Aulianni’am.  2013.  Ekstrak  Daun  Kesum ( Polygonum minus )  Melalui  Ditekannya Produksi Reactive Oxygen Species (ROS ). J Ked Hewan 7(2): 160-2. Widaty S.  dan U. Budimulja. 2016. Dermatofitosis. Dalam Menaldi SL. Bramoko K, Indriati W. Ilmu  Penyakit  Kulit  Dan  Kelamin.  Edisi Ketujuh. Badan Penerbit FKUI. Jakarta. Yossela T. 2015. Diagnosis And Treatment Of Tinea Cruris. J Majority 4(2): 122-8.