## Original Article
Received August 2023 / Revised August 2023/ Accepted September 2023

## Spizaetus: Jurnal Biologi dan Pendidikan Biologi
p-ISSN: 2716-151X
e-ISSN: 2722-869X
Identifikasi Telur Cacing pada Feses Sapi Peranakan Ongole (PO) dan Sapi Bali dengan Metode Natif dan Sedimentasi
Identification of Egg Worms In Ongole Breed Cattle and Bali Cattle Using Native and Sedimentation Methods
Fanni Khoirillah 1 , Dian Fita Lestari 1 *, Siti Istiqomah 2
1 Jurusan S1 Biologi, Fakultas Matematika Dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Bengkulu, Bengkulu, Indonesia
2 UPTD Laboratorium dan Klinik Kesehatan Hewan Provinsi Bengkulu *Corresponding author: dianfita@unib.ac.id
Abstrak. Peternakan  di  Indonesia  rentan  terhadap  berbagai  jenis  penyakit.  Salah  satu    ancaman terhadap kesehatan manusia yaitu zoonosis. Cara untuk mengidentifikasi parasit gastrointestinal pada ternak  bisa  dengan  melakukan  pemeriksaan  atau  pengujian  feses  sapi  secara  rutin.  Pentingnya mengetahui  jenis  cacing  yang  menginfeksi  ternak  agar  dapat  segera  dilakukan  pengobatan  dengan jenis obat anti parasit yang tepat, sehingga pengobatannya menjadi lebih efektif. Tujuan penelitian ini adalah memeriksa feses sapi untuk mengetahui infeksi jenis cacing. Sampel feses sapi didapatkan dari Laboratorium  Peternakan  Universitas  Bengkulu  dan  UPTD  Pembibitan  dan  Pakan  Ternak  (PPT) Bengkulu,  menggunakan  sapi  jenis  Peranakan Ongole (PO)  dan  sapi  Bali.  Metode  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  dengan  dua  metode  yaitu  metode  natif  dan  sedimentasi.  Hasil  penelitian  yang diperoleh menunjukkan bahwa 3 individu sapi menunjukkan positif terinfeksi berbagai jenis cacing. Hasil metode natif ditemukan beberapa jenis cacing yang paling banyak berupa nematoda yang meliputi A. lumbricoides, Strongyloides papillosus, Strongylid dan Toxocara spp., trematoda berupa Schistosoma bovis , dan cestoda berupa Taenia sp. Pada metode sedimentasi juga menunjukkan lebih banyak positif terinfeksi trematoda yang meliputi Schistosoma sp., Fasciola sp, Eurytrema spp, Paramphistomum sp, serta cestoda berupa Taenia sp . Pola pemeliharaan sapi secara intensif mampu menekan penyebaran parasit cacing jauh lebih baik jika dibandingkan dengan pola pemeliharaan sapi secara semi intensif.
Kata Kunci : Feses sapi ; Gatrointestinal; Natif; Parasit cacing;  Sedimentasi
DOI: https://dx.doi.org/10.55241/spibio.v4i3.284

## 1.  Pendahuluan
Satu dari sekian banyak perkerjaan yang digeluti oleh masyarakat  yaitu  sebagai  peternak. Khususnya sapi perah yang merupakan salah  satu  hewan  ternak  yang  saat  ini sangat berpotensi untuk dikembangkan di  Indonesia.  Berdasarkan  data  dari Badan Pusat Statistik (BPS) pada tahun 2016  menyatakan  bahwa  jumlah  dari populasi sapi terkhususnya sapi perah
di  Indonesia  sebanyak  533.860  ekor. Namun  beternak  sapi  perah  memiliki berbagai keluhan kesehatan yang bisa diakibatkan  oleh  kurang  optimalnya pengelolaan limbah sapi  perah. Berdasarkan  teori  Blum,  empat  faktor utama  yang  dapat  mempengaruhi kesehatan  yaitu  faktor  genetik,  faktor lingkungan, faktor pelayanan kesehatan dan  faktor  perilaku [1] .  Definisi  sehat

## menurut
World  Health  Organization (WHO)  adalah  adanya  keseimbangan antara  fungsi  mental,  fisik  dan  sosial serta  makhluk  hidup  terbebas  dari penyakit dan keadaan lemah. Maka dari itu,  fisik,  sosial,  dan  psikologi  yang mencangkup  kognitif  serta  emosional merupakan  bidang  yang  sangat berhubungan dalam pengukuran kesehatan serta kualitas hidup [4] .
Peternakan  Indonesia  termasuk rentan terhadap berbagai jenis penyakit,  bahkan  zoonosis.  Saat  ini ancaman  terbaru  bagi  kesehatan manusia  adalah  zoonosis [5] .  Menurut Kemenkes  RI  (2020),  kasus  rabies  di Indonesia  terus  menyebar  terhitung sejak  Januari  2020  sampai  akhir  Juli 2020  sebanyak  24.745  kasus  rabies yang  dilaporkan  di  Indonesia.  Untuk kasus  kecacingan  pada  manusia  dan hewan  mamalia  di  Indonesia  pada tahun  2019  terdata  bahwa  Provinsi Bangka  Belitung  menempati  urutan nomor  satu  sebagai  daerah  yang memiliki  laporan  kasus  kecacingan paling  banyak,  kemudian  disusul  oleh Papua  Barat  dan  Bali.    Zoonosis  bisa ditularkan  hewan  kepada  manusia dengan  beberapa  cara,  yaitu    bisa dengan  kontak  secara  langsung dengan hewan yang mengidap zoonosis,  atau  dengan  kontak  secara tidak  langsung  misalnya  seperti mengonsumsi hewan yang merupakan pengidap  zoonosis,  kemudian  bisa melalui  aerosol  yang  ada  diudara  saat seseorang  berada  dilingkungan  yang sudah tercemar [5] .
Zoonosis dapat dibedakan Berdasarkan  hewan  penularnya,  ada zoonosis yang berasalah dari satwa liar,
zoonosis yang berasal dari hewan yang tidak  dipelihara  atau  dirawat  oleh manusia  namun  berada  dilingkungan manusia  misalnya  seperti  tikus  yang bisa  menularkan  leptospirosis  dan zoonosis yang berasal dari hewan yang di pelihara oleh manusia [5] .
Salah satu cara untuk
mengidentifikasi adanya parasit gastrointestinal  dari  ternak  adalah dengan  melakukan  pemeriksaan  atau pengujian  dari  feses  sapi  secara  rutin, terkhususnya  sapi  jenis  PO  lokal  dan Sapi  Bali.  Pengujian  dari  feses  sapi terdiri  dari  2  cara  yaitu  pengujian secara  mikroskopik  dan  makroskopik. Yang mana pada pengujian mikroskopik terbagi lagi menjadi 2 yaitu pengujian secara kualitatif dan kuantitatif [7] .  Pengujian  feses  dengan cara  kualitatif  merupakan  pengujian yang  tanpa  perlunya  dihitung  jumlah telur cacing yang digunakan. Pengujian kualitatif  ini  mencangkup  pemeriksaan secara langsung ( direct slide ), metode slotip,  metode  sedimentasi,  metode natif,  metode  pengapungan  (flotasi sederhana) dan teknik sediaan tebal [7] . Dari  setiap  metode  tersebut  tentunya memiliki  kelebihan  dan  kekurangan masing-masing [17] . Dengan mengetahui jenis  cacing  yang  menginfeksi  maka segera  dapat  dilakukan  pengobatan dengan  jenis  obat  anti  parasit  yang tepat, sehingga pengobatannya menjadi  lebih  efektif.    Penelitian  ini dilakukan untuk mengidentifikasi parasit  cacing  pada  sapi  dengan membandingkan  2  tempat  peternakan sapi  dengan  pola  pemeliharaan  yang berbeda.

## 2.  Metode
Penelitian ini dilaksanakan pada tanggal  10  Januari  sampai  dengan  10
Februari 2023 yang bertempat di UPTD Laboratorium  dan  Klinik  Kesehatan
Hewan  Provinsi  Bengkulu.  Alat  yang digunakan  pada  kegiatan  pengujian feses  ini  adalah  berupa  mikroskop, hand  gloves,  slide  glass,  cover  glass , pipet  tetes, beker  glass ,  alat  tulis, pinset, timbangan, saringan, stopwatch dan handphone .  Sedangkan  bahan yang digunakan pada kegiatan pengujian  feses  sapi  ini  adalah  feses sapi jenis Sapi PO lokal dan Sapi Bali, aquades , tusuk gigi, kertas label, plastik dan methylene blue . Pengambilan feses sapi dilakukan dengan menggunakan metode  rektal  yaitu  feses  diambil dengan  cara  memasukkan  tangan  ke dalam rectum sapi menggunakan hand gloves sebanyak satu genggam tangan. Kemudian di masukkan ke dalam plastik dan diberi label.

## Uji Natif
Diambil
feses dengan menggunakan  tusuk  gigi.  Kemudian feses tersebut diletakkan di slide glass dan  diberikan  air  atau  aquades  satu hingga dua tetes dengan menggunakan pipet  tetes.  Lalu  ditutup  dengan menggunakan cover  glass .  Kemudian
diamati  di  bawah  mikroskop  dengan perbesaran 10 x 10.
Uji Sedimentasi
Diambil feses dengan menggunakan  pinset  dan  ditimbang sebanyak  tiga  gram,  kemudian  feses dimasukkan  ke  dalam beker  glass ukuran  100  ml  dan  ditambahkan  air sebanyak 50 ml, setelah itu dihomogenkan.  Selanjutnya  disaring dan dimasukkan ke dalam baker glass lain,  lalu  ditambahkan  air  kurang  lebih 80 ml dan didiamkan selama lima menit. Setelah itu disisakan filtrat sebanyak 10 ml.  Kemudian  ditambahkan  lagi  cairan sebanyak  80  ml  dan  ditunggu  selama lima menit. Selanjutnya dibuang cairan dan disisakan kurang lebih sebanyak 5 ml.  Setelah  itu  diambil  filtrat  dan diletakkan  di slide  glass ,  serta ditambahkan satu tetes methylene blue . Kemudian diamati di bawah mikroskop dengan perbesaran 10x10.
Telur  cacing  yang  terlihat  di bawah
mikroskop kemudian diidentifikasi  menggunakan        buku Veterinary Clinical Parasitology 9th Edition

## 3.  Hasil dan Pembahasan
Penelitian  ini  dilakukan  dengan  3 ekor  sapi  yang  mana  pada  pengujian feses  sapi  ini  menggunakan  dua metode uji, yang pertama yaitu dengan menggunakan  metode  uji  natif  dan
yang  kedua  menggunakan  metode  uji sedimentasi,  dan    pada  setiap  sampel dilakukan tiga kali pengulangan. Setiap metode  uji  ini  memiliki  kelebihan  dan kekurangan masing-masing.

## Tabel 1. Kartu Kontrol Sampel
NO Kode/ Label Nama hewan (No. Telinga) Jenis Umur Sex Ras Tempat pengambilan sampel 1. P250102 (tidak ada nomor telinga) Sapi ±2 tahun  Jantan  Sapi PO Lokal Desa/Kelurahan Kandang  Limun, Kecamatan Bangkahulu, Bengkulu
2. P250109 41417 Sapi ±2 tahun  Betina Sapi Bali Desa/Kelurahan Kandang  Limun, Kecamatan Muara Bangkahulu, Bengkulu 3. P260116 0744 Sapi ±7 tahun  Betina Sapi Bali Desa/Kelurahan Pematang Gubernur, Kecamatan
Muara Bangkahulu, Bengkulu

## Hasil Pemeriksaan Feses Dengan Metode Natif
Berdasarkan hasil pemeriksaan feses dari tiga sampel yang terdiri dari dua Sapi Bali dan satu PO lokal maka didapatkan hasil seperti yang ditunjukkan pada Tabel 2:
Tabel 2. Hasil Pengujian Feses dengan Metode Natif
Kode Sampel Nematoda Cestoda Trematoda P250102.1 P250102.2 P250102.3 + - + + - - + - - P250109.1 P250109.2 P250109.3 + - - + - - - - - P260116.1 P260116.2 P260116.3 + - - + + - + - -

## Hasil pengujian telur cacing dengan metode natif terlihat pada Tabel 3
Tabel 3. Perbandingan Gambar Pengujian dan Gambar Referensi
Kode sampel Klasifikasi Gambar pengujian Gambar Referensi P250102.1 Nematoda Ascaris lumbricoides (10x10)
Ascaris lumbricoides [11]

## Nematoda
Strongyloides papillosus (10x10) Strongyloides papillosus [18] Nematoda
Strongylid (10x10) Strongylid [18]
Trematoda Schistosoma bovis (10x10)
Schistosoma bovis [9] P250102.2 Nematoda Strongylid (10x10) Strongylid [18] Nematoda Strongylid (10x10)
P250102.3
Nematoda Strongylid (10x10) Strongylid [18] Nematoda Strongylid (10x10) Nematoda Toxocara spp (10x10) Toxocara spp [18] P250109.1

## Nematoda
Strongylid (10x10)
Strongylid [18] P250109.2 Nematoda
Strongylid (10x10)
Strongylid [18]
P260116.1

## Nematoda
Ascaris lumbricoides
(10x10)
Ascaris lumbricoides [11] Nematoda
Strongylid (10x10)
Strongylid [18]
P260116.2 Nematoda
Ascaris lumbricoides (10x10)
Ascaris lumbricoides [11] Cestoda
Taenia spp (10x10) Taenia spp [18]
P260116.3 Nematoda
Ascaris lumbricoides (10x10) Ascaris lumbricoides [3]
Berdasarkan  hasil  pengujian  di  bawah mikroskop dengan perbesaran 10 x 10
maka  didapatkan  hasil  pada  sampel P250102  ditemukan  telur  cacing A.
lumbricoides ., S.  papillosus.,  S.  bovis ., Toxocara spp.,  Strongylid  dan  telur Eimeria spp  yang  berasal  dari  kelas protozoa.  Sedangkan  pada  sampel P250109  ditemukan  telur  cacing Strongylid  dan  telur Eimeria spp  yang berasal dari kelas protozoa, serta pada sampel  P260116  ditemukan  telur cacing A.  lumbricoides.,  Taenia spp., dan Strongylid.
Ascaris lumbricoides
Siklus hidup
ascaris lumbricoides adalah dimulai dari cacing keluar  bersama  dengan  tinja.  Apabila telur cacing jatuh di tanah yang lembab dengan  suhu  tang  optimal,  maka  telur berkembang  menjadi  infektif  yang mengandung  larva  cacing  dan  apabila tertelan  oleh  hewan  mamalia  maka akan  menetas  menjadi  larva  di  usus halus,  khususnya  pada  bagian  usus. Cacing ini bisa menyebabkan diare [2] .

## Strongyloides
Dalam siklus hidup strongyloides yaitu  telur  diletakkan  di  mukosa  usus duodenum  dan  jeyunum  kemudian menetas menjadi larva rabditiform yang dapat masuk ke dalam ke rongga usus serta  dikeluarkan  Bersama  tinja. Setelah jatuh ke tanah larva rabditiform berubah bentuk menjadi filariform. Bila larva filariform ini menembus kulit maka akan masuk ke dalam peredaran darah vena  dan  kemudian  melalui  jantung sampai  ke  paru – paru.  Dari  paru – paru parasit  cacaing  akm  menjadi  dewasa dan  menembus  alveolus  masuk  ke trakea  lalu  masuk  kedalam  usus halus [16] .
Schistosoma sp. Telur  yang  keluar  melalui  tinja memerlukan air untuk menetas menjadi mirasidium  kemudian  larva  akan mencari hospes berupa siput. Kemudian  mirasidium  berkembang
pada tubuh hospes menjadi sporokista I  dan  memproduksi  sporokista  II, setelah  itu  sporokista  II  berkembang menjadi serkaria yang bisa menembus kulit, melalui peredaran darah kemudian masuk ke jantung dan paru- paru  setelah  itu  masuk  ke  hati  dan tumbuh menjadi cacing dewasa. Cacing jantan  dan  betina  akan  bermigrasi  ke vena  dan  menghasilkan  telur,  sekitar 50%  telur  akan  dikeluarkan  melalui tinja [13] .
Toxocara sp Telur  infektif Toxocara sp. menetas  dan  menghasilkan  larva stadium kedua, yang kemudian bermigrasi ke hati dan berubah menjadi larva stadium ketiga. Setelah berkembang  menjadi  larva  stadium ketiga,  larva  tersebut  akan  bermigrasi ke  paru-paru.  Di  paru-paru  larva bermigrasi menuju alveolus, bronkiolus, bronkus dan selanjutnya menuju trakea. Dari  trakea,  larva  berpindah  ke  faring, yang selanjutnya menuju ke kerongkongan,  lambung,  dan  akhirnya sampai di usus halus. Infeksi [15] .
Taenia spp Telur Taenia spp yang termakan oleh sapi akan tumbuh dan berkembang menjadi larva onkosfer di usus.  Onkosfer  akan  menetas  dalam duodenum,  mengadakan  penetrasi  ke dalam dinding usus, dan terbawa aliran limfe  atau  darah,  kemudian  akan difiltrasi  keluar  otot  lurik  membentuk kista  yang  disebut  Cysticercusbovis (larva  cacing).  Kista  akan  membesar dan  membentuk  gelembung  yang disebut cysticercus (sistiserkus). Manusia bisa terkena infeksi cacing pita dengan memakan daging yang mengandung kista [8] .

## Hasil Pemeriksaan Feses Dengan Metode Sedimentasi
Berdasarkan hasil uji dengan metode sedimentasi didapatkan hasil seperti pada Tabel 4.
Tabel 4. Hasil Pengujian Feses dengan Metode Sedimentasi
Kode Sampel Cestoda Trematoda P250102.1 P250102.2 P250102.3 -
+
- + -
+ P250109.2 P250109.3 - + - + P260116.1 + -
Tabel 5. Perbandingan Gambar Hasil Pengujian dan Gambar Referensi
Kode sampel Klasifikasi Gambar Hasil Pengujian Gambar Referensi P250102.1 Trematoda
Schistosoma sp . (10x10) Schistosoma sp . [9] Trematoda Schistosoma sp . (10x10) P250102.2 Trematoda
Fasciola sp.
(10x10)
Fasciola sp. [11]
P250102.3
Trematoda
Fasciola sp.
(10x10)
Fasciola sp. [11]
Trematoda
Eurytrema spp. (10x10) Eurytrema spp. [18] P250109.2 Trematoda
Paramphistomum sp. (10x10) Paramphistomum sp. [11] P250109.3
Trematoda
Paramphistomum sp.
(10x10) Paramphistomum sp. [11]
P260116.1 Cestoda
Taenia sp.
(10x10) Taenia sp [18] Berdasarkan hasil yang diperoleh maka sapi dengan kode sampel P250102 dan
P250109 teridentifikasi terjangkit banyak  jenis  parasit  cacing  sehingga
sapi  terlihat  lebih  kurus  dan  kurang sehat  jika  di  bandingkan  dengan  sapi kode  sampel  P260116.  Hal  ini  bisa disebabkan karena perbedaan dari pola pemeliharaan  serta  kondisi  lingkungan dari kedua tempat tersebut. Untuk  pola  pemeliharaan  sapi dengan  kode  sampel  P250102  dan P250109  adalah  secara  semi  intensif, sapi  akan  dikeluarkan  dari  kandang pada jam 9 pagi dan akan dimasukkan kembali ke dalam kandang pada jam 5 sore.
Pada  sapi  dengan  kode  sampel P250102 berada di kandang satu yang mana pada kandang satu ini terdiri dari empat sapi yang tidak menyatu antara satu sapi dengan sapi lainnya, terdapat sekat di antara setiap sapi. Kemungkinan besar infeksi yang terjadi pada  sapi  tersebut  dikarenakan kandang  yang  kurang  bersih,  karena pada  lantai  kandang  masih  banyak kotoran-kotoran yang tidak dibersihkan dengan  optimal,  kemudian  bisa  juga disebabkan karena rawa yang letaknya beberapa meter dari kandang. Sedangkan  pada  sapi  dengan  kode sampel P250109 terletak pada kandang dua yang mana kandang ini berdampingan  dengan  rawa,  hal  inilah yang bisa menyebabkan sapi terjangkit parasit cacing.
Kejadian  infeksi  parasit  pada ternak  bisa  disebabkan  dengan  cara pemeliharaannya, jika peternak menggunakan sistem semi intensif bisa menyebabkan peluang yang besar bagi sapi terinfeksi kecacingan, karena sapi dibiarkan untuk mencari makan sendiri. Sedangkan  untuk  peternak  yang menggunakan  sistem  intensif,  dapat menurunkan risiko infeksi karena ternak diberikan  pakan  di  dalam  kendang [12] . Untuk  sapi  dengan  kode  sampel P260116  dipelihara  secara  intensif. Dengan  keadaan  sapi  dimasukkan dalam  1  kadang  yang  sama  namun
dengan  ukuran  kandang  yang  sangat luas  dan  limbah  kotoran  sapi  di bersihkan optimal.
Pada  sapi  dengan  kode  sampel P250102  dan  P250109  teridentifikasi positif
Fasciola sp dan
Paramphistomum sp,  berdasarkan morfologi  dari  sapi  tersebut  terlihat kurus  dan  memiliki  bulu  yang  kusam dengan  kondisi  yang  kurang  bersih. Namun  sudah  diberikan  vaksin  PMK dan  booster.  Sedangkan  sapi  dengan kode  sampel  P260116  teridentifikasi negatif Fasciola sp serta Paramphistomum sp,  dan  memiliki badan  yang  lebih  berisi  serta  kondisi rambut yang tidak terlalu kusam.
Fasciola sp. dan Paramphistomum sp.  adalah  cacing trematoda  yang  siklus  hidupnya termasuk  cukup  panjang.  Beberapa faktor  yang  dapat  mempengaruhi infeksi  dari Fasciola sp  adalah  faktor intrinsik  yaitu  usia  dan  jenis  kelamin, sedangkan  untuk  faktor  ekstrinsiknya yaitu  berupa  makanan,  sistem  dalam pengelolaan  ternak  serta  kebersihan lingkungan [6] .
Siklus  hidup Paramphistomum sp. tergolong sama dengan siklus hidup dari Fasciola sp.  yang  mana  dimulai ketika telur cacing fasciola dikeluarkan bersamaan  dengan  tinja.  Kemudian telur akan menetas menjadi miracidium pada  suhu  optimum,  miracidium melanjutkan  siklus  hidupnya  jika berhasil  menemukan  kehadiran  siput ( Lymnea  rubiginosa )  sebagai  induk semang antara [14] . Penyakit kecacingan pada  ternak  tidak  secara  langsung menyebabkan  kematian,  akan  tetapi bisa  menyebabkan  beberapa  kerugian seperti  menyebabkan  penularan  pada manusia,  penurunan  kualitas  daging, penurunan  produksi  susu  pada  ternak sapi perah dan juga bisa menyebabkan
terjadinya  penurunan  berat  badan ternak [10] .
Pencegahan  dan  pengendalian dari  penyakit  pada  ternak  sangat diperlukan agar ternak yang dipelihara tidak  menyebabkan  berbagai  kerugian dan tetap dalam keadaan sehat. Untuk meminimalisir dan menghindari munculnya gejala kecacingan peternak wajib  memberikan  obat  cacing  serta
vitamin. Selain itu, tindakan yang bisa di lakukan  oleh  peternak  sapi  adalah dengan  memisahkan  kandang  ternak yang sudah terjangkit penyakit sapi, jika tidak dilakukan pemisahan maka dapat mempercepat  terjadinya  penularan penyakit  pada  ternak  yang  lain.  Salah satu  pengobatan  untuk  penyakit kecacingan  pada  sapi  adalah  dengan menyuntikkan  Dovenix  dan  diberikan vitamin B kompleks [10] .

## 4.  Simpulan
Berdasarkan hasil yang pengujian  dapat  disimpulkan  bahwa pada  sampel  feses  sapi  yang  berasal dari  Laboratorium  Peternakan  UNIB dan UPTD PPT dengan metode uji natif menunjukkan  positif  terinfeksi A. lumbricoides, S. papillosus, Strongylid,
S. bovis dan Toxocara spp pada sampel P250102,    Strongylid  pada  sampel P250109, A.  lumbricoides ,  Strongylid dan Taenia sp  pada  sampel  P260116.
Serta  dengan  metode  sedimentasi
menunjukkan  positif Schistosoma sp., Fasciola sp  dan  Eurytrema  spp  pada sampel P250102, Paramphistomum sp pada sampel P250109, serta Taenia sp pada  sampel  P260116.  Berdasarkan hasil uji tersebut maka pola pemeliharaan  sapi  secara  intensif mampu  menekan  penyebaran  parasit cacing jauh lebih baik jika dibandingkan dengan pola pemeliharaan sapi secara semi intensif.

## Daftar Pustaka
[1] BPS. (2016). Populasi Sapi Perah Menurut Provinsi 2009-2016 . Jakarta: Badan Pusat Statistik
[2] Elfred, Arwati, H., dan Suwarno. (2016). Gambaran Basofil, TNF- α, dan IL -9 Pada Petani Terinfeksi STH di kabupaten Kediri Elfred*1. Jurnal Biosains Pascasarjana , 18(3), 230 – 242.
[3] Irsya, R. P., Mairawita dan Herwina, H. (2017). Jenis-Jenis Parasit Pada Sapi Perah Di Kota Padang Panjang Sumatera Barat. Metamorfosa: Journal of Biological Sciences ,
4 (2), 189.https://doi.org/10.24843/metamorfosa.2017.v04.i02.p09
[4] Jacob, D. E., dan Sandjaya. (2018). Faktor faktor yang mempengaruhi kualitas hidup masyarakat Karubaga district sub district Tolikara propinsi Papua. Jurnal Nasional Ilmu Kesehatan (JNIK) , 1 (69), 1 – 16.
[5] Kemenkes RI. 2017. Rencana aksi kegiatan pencegahan dan pengendalian penyakit tular vektor dan zoonotik . Jakarta: Kemenkes RI
[6] Khairiyah.  (2011).  Zoonosis  dan  Upaya  Pencegahannya  (Kasus  Sumatera  Utara).  In Jurnal Litbang Pertanian (Vol. 30, Issue 3).
[7] Majawati, E. S., dan Matatula, A. E. (2019). Identifikasi Telur Cacing Fasciola hepatica pada Sapi di Peternakan Sapi Daerah Tangerang. Jurnal Kedokteran Meditek , 24 (68),
60 – 66. https://doi.org/10.36452/jkdoktmeditek.v24i68.1703
[8] Regina,  P,  M.,  Halleyantoro,  R.,  Bakrie,  S.,  dan  Bakri,  S.  (2018). Perbandingan Pemeriksaan Tinja Antara Metode Sedimentasi Biasa dan Metode Sedimentasi Formol- Ether Dalam Mendeteksi Soil-Transmitted Helminth . 7 (2), 527 – 537.
[9] Setiyani, E. (2011). Taenia saginata. Balai Litbang P2B2 Banjarnegara, 7(2), 57 – 58.
[10] Soentjens, P., Cnops, L., Huyse, T., Yansouni, C., De Vos, D., Bottieau, E., Clerinx, J., dan  Van  Esbroeck,  M.  (2016).  Diagnosis  and  Clinical  Management  of  Schistosoma haematobium – Schistosoma bovis Hybrid Infection in a Cluster of Travelers Returning from Mali. Clinical Infectious Diseases , 63 (12), 1626 – 1629. https://doi.org/10.1093/cid /ciw493
[11] Syafrudin. (2014). Manajemen Usaha Ternak Potong . Penebar Swadaya: Jakarta
[12] Tantri, N., Setyawati, T. R., dan Khotimah, S. (2013). Prevalensi dan Intensitas Telur Cacing Parasit pada Feses Sapi ( Bos sp.) Rumah Potong Hewan (RPH) Kota Pontianak
Kalimantan Barat. Jurnal Protobiont , 2 (2), 102 –
106.http://jurnal.untan.ac.id/index.php/jprb/article/view/2753/2731
[13] Tolistiawaty, I., Widjaja, J., Lobo, L. T., dan Isnawati, R. (2018). Parasit Gastrointestinal pada  Hewan  Ternak  di  Tempat  Pemotongan  Hewan  Kabupaten  Sigi,  Sulawesi Tengah. Balaba:  Jurnal  Litbang  Pengendalian  Penyakit  Bersumber  Binatang Banjarnegara , 71 – 78. https://doi.org/10.22435/blb.v12i2.200
[14] Utami, P. D. (2008). Schistosoma Japonicum. Hang Tuah Medical Journal , 6(3), 117- 1 53.
[15] Wibisono,  F.  J.,  dan  Rondius,  S.  (2015).  Insiden  Hewan  Qurban  Sebagai  Vektor Penular  Penyakit  Cacing  Hati  (Fasciolosis)  Di  Surabaya.  Jurnal  Kajian  Veteriner  D, 3(2), 139 – 145.
[16] Widiastuti, W. A., Soma, I. G., dan Arjentinia, I. P. G. Y. (2018). Studi Kasus: Pneumonia Karena Migrasi Larva Toxocara Sp. pada Anjing Basset Hound. Indonesia Medicus Veterinus PISSN, 7(6), 675 – 688. https://doi.org/10.19087/imv.2018.7.6.675
[17] Widyaningsih,  I.  (2017).  Strongyloides.  Fakultas  Kedokteran  Universitas  Wijaya Kusuma Surabaya. https://doi.org/http:/dx.doi.org/10.30742/jikw.v0i0.76
[18] Yunizeta,  R.,  Barunawati,  T.,  Program,  S.,  Veteriner,  S.  P.,  Vokasi,  S.,  &  Pertanian Bogor, I. (2021). Pemeriksaan Kecacingan Secara Kualitatif pada Sapi Perah Friesian Holstein  di  KPGS  Cikajang  Garut  Qualitative  Examination  of  Helminthiasis  of  Dairy Cows Friesian Holstein in KPGS Cikajang Garut .
[19] Zajac,  A.M.,  Conboy,  G.A.,  Little,  S.E.,  Reichard,  M.V.  (2021). Veterinary  Clinical Parasitology 9th Edition . Wiley Blackwell