Vol. 09 No. 3, Desember 2018, Hal 217-222 ISSN: 2086-8227
SKRINING BAKTERI SELULOLITIK ASAL SALURAN PENCERNAAN RAYAP UNTUK MENDEKOMPOSISI TUNGGUL KARET
(Screening of cellulolytic bacteria origined from termite gut for decomposing rubber tree stump)
Silviana Arsyad 1* , Suryo Wiyono 2 , Elis Nina Herliyana 3
(Diterima Agustus 2017/Disetujui Oktober 2017)

## ABSTRACT
The rubber tree stump is a source of white root fungus inoculums and as a source of  infection that causes the death of rubber plant. The emergence of this disease is closely related to the cleanliness of the land such as leftover  trees  or  stumps,  shrubs  and  bushes  which  stacked  or  still  in  the  ground.  One  of  the  symbionts organisms found in gut of termite and play a role in the decomposition of cellulose, are bacteria. Termite are social  insects  that  are  efficiently  decompose  lignocelluloses  with  the  aid  of  their  associated  microbial symbionts  located  in  termite  gut.  The  purpose  of  this  study  was  to  obtain  cellulolytic  bacterial  isolates  are derived  from  gut  of  termite  and  getting  an  cellulolytic  which  showed  the  best  ability  in  decomposing  rubber tree  stumps.  The  result  termite  samples  from  oil  palm,  rubber,  and  dry  wood  contain  cellulolytic  bacteria characterized  by  clear  zones  around  bacterial  colonies.  Bacterial  isolates  showing  the  ability  to  degrade cellulose are 31 isolates and five isolates are safe for plants, animals, or mammals. The three bacterial isolates (NK 4, NS 4, and NS 5) used in the test on rubber tree stumps able to decompose rubber tree stump.  Bacterial isolates were each obtained NK 4 13.52%, NS 4 18.40% and NS 5 17.88%.
Keywords: bacteria cellulolytic, rubber tree stumps, termite

## PENDAHULUAN
Tunggul  karet  merupakan  sumber  inokulum  jamur akar  putih  dan sebagai  sumber  infeksi yang menyebabkan  tanaman  karet  mengalami  kematian. Nugroho  (2012)  dan  Manurung et  al. (2015) melaporkan bahwa di lahan tanaman karet sering terjadi serangan  jamur Rigidoporus  microporus (= R.  lignosus ) penyebab  penyakit  akar  putih  yang  hidup  dari  sisa-sisa bagian  tunggul  karet.  Timbulnya  penyakit  ini  erat hubungannya  dengan  kebersihan  lahan  seperti  sisa tebangan  pohon  atau  tunggul,  perdu,  dan  semak  yang ditumpuk  atau  yang  masih  berada  dalam  tanah.  Hal  ini merupakan  sumber  penularan  jamur  akar  putih  yang sangat efektif serta mudah menyebar ke tunggul lainnya. Nugroho  dan  Iswanto  (2009)  menyebutkan  bahwa ketersediaan  alat  pencacah  di  Indonesia  masih  sangat terbatas dan relatif mahal. Sehingga dalam memusnahkan  tunggul  karet  atau  sisa  hasil  tebangan kayu karet diperlukan bioteknologi.
Alternatif yang dapat ditempuh dengan bioteknologi pelapukan  tunggul  karet  yaitu  menggunakan  mikrob pelapuk  kayu  dari  kelompok  bakteri  selulolitik.  Kayu tersusun atas lignin, selulosa, dan hemiselulosa. Bakteri selulolitik dipilih sebagai salah satu mikrob pendegradasi selulosa. Bakteri memiliki tingkat pertumbuhan  yang  lebih  cepat  dan  mudah  dikontrol dibandingkan  dengan  kelompok  mikrob  lainnya (Baharuddin et  al. 2010).  Bakteri  selulolitik  yang digunakan dapat berasal dari  saluran pencernaan rayap. Pada  umumnya  rayap  merupakan  serangga  sosial  yang efisien  dalam  mendekomposisi  lignoselulosa  dengan bantuan mikrob simbionnya, yang berada dalam saluran pencernaan  (Chew  2012;  Upadhyaya et  al. 2012). Rayap umumnya ditemukan pada kayu mati atau pohon hidup,  di  hutan,  dan  juga  pada  kayu  kontruksi  rumah. Disatu  sisi,  keberadaan  rayap  sering  kali  menjadi serangga  perusak  kayu  bagi  tanaman  perkebunan  dan kontruksi  bangunan.  Disisi  lain,  rayap  memiliki  peran sangat  penting  dalam  ekosistem  tanah  yaitu  dalam proses  daur  ulang  biomasa  lignoselulosa  kayu.  Rayap yang  berasal  dari  kelapa  sawit,  kayu  karet  dan  kayu kontruksi  berpotensi  sebagai  sumber  bahan  selulolitik. Semua  bahan  yang  mengandung  selulosa  seperti  kayu merupakan  sumber  makanan  utama  rayap.  Tujuan penelitian  ini  ialah  1)  mendapatkan  bakteri  selulolitik yang  berasal  dari  saluran  pencernaan  rayap  dan  2) memperoleh bakteri selulolitik potensial dalam mendekomposisi tunggul karet.
1 Mahasiswa Pascasarjana Bioteknologi Tanah dan Lingkungan, Sekolah Pascasarjana, IPB
* Penulis korespondensi: e-mail: silvianaarsyad@gmail.com
2 Staff Pengajar Dept. Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, IPB
3 Staff Pengajar Dept. Silvikultur, Fakultas Kehutanan, IPB

## METODE PENELITIAN

## Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  Januari  2016 sampai  Februari  2017.  Penelitian  ini  dilaksanakan  di Laboratorium  Bioteknologi  Tanah,  Departemen  Ilmu Tanah  Sumberdaya  Lahan,  Fakultas  Pertanian  dan Laboratorium  Penyakit  Hutan,  Departemen  Silvikultur, Fakultas Kehutanan, Institut Pertanian Bogor.

## Alat dan Bahan Penelitian
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini antara lain  cawan  Petri,  tabung  reaksi, shaker , autoclave , timbangan  analitik,  mikroskop  cahaya,  mikroskop stereo, inkubator dan Laminar air Flow (LAF).  Bahan yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  terdiri  atas  rayap tanaman  kelapa  sawit,  kayu  karet,  dan  kayu  kontruksi, alkohol 70%, aquades steril, media NA ( Nutrient Agar ), media  TSB  ( Trypticase  Soy  Broth ),  media  CMC ( Carboxymethyl  Cellulose ),  pasir  kuarsa,  dan  tunggul karet.

## Pengambilan Contoh Rayap
Pengambilan contoh rayap berasal dari rayap kelapa sawit,  rayap  karet  dan  rayap  kayu  kering  kontruksi  di dalam  kampus  IPB.  Contoh  rayap  yang  diperoleh disimpan  dalam  wadah  plastik  dan  diberi  label  untuk masing-masingnya.

## Isolasi Bakteri Selulolitik Asal Saluran Pencernaan Rayap
Isolasi  bakteri  pada  saluran  pencernaan  rayap dengan  mengambil  sebanyak  10  ekor  untuk  setiap perlakuannya. Selanjutnya dilakukan sterilisasi permukaan rayap menggunakan alkohol 70% selama 30 detik  dengan  cara  dicelupkan.  Sterilisasi  permukaan rayap  dilakukan  untuk  mematikan  atau  meminimalkan mikrob  kontaminan.  Setelah  sterilisasi  rayap  dibilas dengan  aquades  steril  dan  dikering  udara  selama  1 menit.  Perut  rayap  di  bedah  dalam  keadaan  steril. Saluran  pencernaan  rayap  yang  diperoleh  kemudian digerus hingga menjadi suspensi.
Suspensi  saluran  pencernaan  rayap  di  masukkan pada  tabung eppendorf dengan  menambahkan  aquades steril  1  ml.  Sebanyak  1  mL  diambil  dan  di  tambahkan ke  dalam  tabung  reaksi  yang  berisi  aquades  steril sebanyak  9  ml  pada  pengenceran  berseri  yaitu  10 1 sampai 10 5 . Kemudian mengambil sebanyak 0.1 mL dan disebar  pada  media  NA  dan  TSA.  Inkubasi  pada  suhu 37 o C selama tiga hari.

## Skrining Isolat Bakteri Selulolitik
Isolasi  bakteri  selulolitik  asal  saluran  pencernaan rayap  menggunakan  media  selektif carboxymethyl cellulose sebagai  sumber  karbon  tunggal  dan  untuk melihat aktivitas  selulosanya. Isolat bakteri pada  media agar  NA  dan  TSA  yang  tumbuh  diambil  menggunakan jarum  ose  dalam  keadaan  aseptis  dan  di  goreskan  pada media CMC agar.  Media tersebut diinkubasi pada suhu 30 o C selama seminggu.

## Karakterisasi Bakteri Selulolitik Asal Saluran Pencernaan Rayap
Karakterisasi  bakteri  dilakukan  untuk  mengetahui jenis  bakteri  selulolitik.  Isolat  bakteri  yang  telah diisolasi diamati secara morfologi yaitu dilihat dari segi bentuk,  warna,  margin,  elevasi,  permukaan  dan  ukuran koloni. Isolat bakteri yang telah diisolasi diamati secara biokimia  yaitu  dilihat  menggunakan  uji  Gram,  uji motilitas,  uji  katalase,  uji  oksidase,  uji  oksidatif fermentatif,  uji  hidrolisis  pati,  uji  hipersensitif,  uji  agar darah, dan uji kemampuan selulosa.

## Uji Keefektifan Bakteri Selulolitik Terpilih dalam Dekomposisi Tunggul Karet
Pengujian  keefektifan  bakteri  selulolitik  pada tunggul  karet  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap dengan  satu  faktor  yaitu  jenis  bakteri  yang  terdiri  dari empat  perlakuan  dan  empat  ulangan.  Metode  yang digunakan  adalah  metode  modifikasi  JIS  K  1571  (JIS 2004).  Pengujian  bakteri  selulolitik  pada  tunggul  karet dilakukan  dengan  beberapa  tahapan  yakni  pengambilan tunggul  karet  uji.  Tunggul  karet  di  potong  dengan ukuran  2  cm  x  2  cm  x  1  cm  dengan  arah  pemotongan serat cross ,  mengikuti  metode  standar  yang  sesuai dengan JIS K 1571.
Penyiapan  biakan  bakteri  selulolitik.  Media  biakan bakteri  yang  digunakan  adalah  media  TSB  ( Trypticase Soy Broth ). Media biakan bakteri ini menggunakan pasir kuarsa steril yang telah dicampurkan dengan media TSB cair.  Sebanyak  40  ml  media  tersebut  dimasukkan  ke dalam  botol  uji  dan  ditutup.  Botol  uji  yang  telah  berisi media biakan TSB disterilkan ke dalam autoklaf selama 30  menit  pada  tekanan  15  psi.  Bakteri  selulolitik diinokulasi sehari kemudian. Tahapan terakhir pengujian  keefektifan  penguraian  bakteri  selulolitik pada tunggul karet. Memasukkan tunggul karet uji yang telah  steril  dan  ditimbang  bobotnya  ke  dalam  botol  uji. Pengujian  keefektifan  penguraian  tunggul  karet  uji dilakukan selama 12 minggu. Tunggul karet uji dipanen dan  di  masukkan  ke  dalam  oven  selama  24  jam  pada suhu  60 o C  dan  ditimbang.  Presentase  penurunan  bobot dihitung  atas  dasar  selisih  bobot  tunggul  karet  sebelum dan sesudah diaplikasikan dengan bakteri selulolitik.
Perhitungan  presentasi  penurunan  bobot  tunggul karet dengan menggunakan rumus sebagai berikut:
Dimana, P  :  Persentase penurunan bobot (%) W 1 :  Bobot kering tanur contoh uji sebelum diumpankan (g)
W 2 :  Bobot kering tanur contoh uji setelah diumpankan (g)

## Analisis Data
Hasil  penelitian  dianalisis  menggunakan Analisis  of Variance (Anova)  dengan Software SAS  ( Statistical analysis  system )  dan  data  kualitatif  disajikan  dalam bentuk  tabel  dan  gambar.  Jika  terdapat  pengaruh signifikan  maka  dilakukan  uji  lanjut Duncan  Multiple Range Test (DMRT) 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Pengambilan Contoh Rayap di Lapangan
Contoh  rayap  berasal  dari  tanaman  kelapa  sawit, karet  dan  kayu  kering  kontruksi  di  ambil  dari  daerah Cikabayan  Kampus  IPB  Dramaga  (Gambar  1).  Hasil penelitian  ini  menunjukkan  bahwa  rayap  kelapa  sawit termasuk  spesies Odontotermes sp.  terlihat  dari  bentuk kepala  kasta  prajurit  berwarna  coklat  tua  atau  coklat kemerahan  dan  ciri  tubuh  berwarna  kuning.  Rayap  ini banyak  ditemukan  di  perkebunan  sawit  (Gambar  1a). Rayap  karet  termasuk  spesies Microtermes sp.  terlihat dengan bentuk kepala kasta prajurit berwarna coklat tua atau  kemerahan  dan  memiliki  ciri  tubuh  berwarna kuning  terang  (Gambar  1b).  Rayap  ini  banyak ditemukan di kayu-kayu yang sudah lapuk dan biasanya mengeluarkan  bau  yang  khas.  Nandika et  al .  (2015) melaporkan  kelimpahan  spesies  rayap Microtermes insperatus Kemmer  di  kampus  IPB  Dramaga  paling banyak dibandingkan spesies yang lain dan mempunyai kelimpahan yang tinggi di perkebunan karet dan kelapa sawit.  Rayap  kayu  kering  kontruksi  termasuk  spesies Cryptotermes sp.  terlihat  dari  bentuk  kepala  berwarna coklat  gelap  kemerahan  (Gambar  1c). Spesies  ini banyak  ditemukan  menyerang  di  permukiman  sehingga menyebabkan kerusakan dalam kayu.

## Isolasi, Skrining Bakteri Asal Saluran Pencernaan Rayap yang Bersifat Selulolitik
Isolat bakteri asal rayap kelapa sawit, karet dan kayu kering  kontruksi  diperoleh  111  isolat  bakteri.  Pada skrining  awal  sebanyak  31  isolat  bakteri  yang menunjukkan  zona  bening  pada  media  agar  CMC.  Hal
ini  karena  bakteri  selulolitik  mampu  tumbuh  yang ditandai  dengan  zona  bening  di  sekitar  koloni. Terbentuknya  zona  bening  menjadi  indikasi  bahwa isolat  bakteri  tergolong  bakteri  selulolitik.  Igwo et  al . (2013)  dan  Ngangi et  al. (2013)  melaporkan  bahwa zona bening di sekitar koloni menunjukkan pemanfaatan selulosa sebagai satu-satunya sumber karbon, energi dan substrat  dari  CMC  dihidrolisis  oleh  enzim  selulase. Selanjutnya  isolat  bakteri  yang  terbentuk  zona  bening dipilih untuk pengujian patogenisitas. Hal ini dilakukan untuk  meminimalkan  isolat  dalam  pengujian  ke  tahap berikutnya  serta  mendapatkan  isolat  bakteri  yang  aman bagi tanaman, mamalia ataupun hewan (Gambar 2).
Hasil  uji  hipersensitif    pada  daun  tembakau  hanya isolat  TS  18  yang  menunjukkan  reaksi  hipersensitif positif.  Hal  ini  karena  daun  tembakau  menunjukkan gejala  nekrosis  pada  bagian  daun  yang  disuntikan suspensi bakteri uji. Pradana (2016) melaporkan bahwa membran  seluler  pada  daun  tembakau  yang  mengalami kontak  dengan  bakteri  akan  hancur  dan  mengalami pengeringan  atau  gejala  nekrosis  diindikasi  sebagai patogen tanaman. Tanaman tembakau memiliki sensitivitas yang cukup tinggi dan morfologi daun yang cukup tebal sehingga tidak menimbulkan rusaknya fisik daun (Rupaedah 2014). Bakteri yang tidak menunjukkan  gejala  nekrosis  pada  uji  hipersensitif dilakukan  uji  hemolitik  yang  aman  bagi  hewan  atau mamalia.  Hasil  uji  hemolitik  diketahui  lima  isolat bakteri yang aman bagi mamalia. Hal ini diduga karena bakteri tersebut tidak mampu dalam melisis media agar darah. Sebanyak 25 isolat bakteri yang memperlihatkan zona  bening  di  sekitar  koloni.  Hal  ini  dapat menimbulkan  patogen  bagi  hewan  atau  mamalia.
Gambar 3  Uji  kemampuan  bakteri  selulolitik  dengan media CMC agar
Gambar 1 (a) Rayap Kelapa Sawit termasuk spesies Odontotermes sp., (b) Rayap Karet termasuk spesies Microtermes sp., dan (c) Rayap Kayu Kering Kontruksi termasuk spesies Cryptotermes sp.
Gambar 2  Hasil uji isolat bakteri (a) Uji Hipersensitif pada daun tembakau, dan (b) Uji hemolitik pada media agar darah
Suryanto et  al .  (2007)  melaporkan  bahwa  isolat  yang mampu  melisiskan  darah  pada  media  agar  darah ditandai dengan adanya zona bening.
Hasil uji kemampuan bakteri selulolitik menunjukkan bahwa tiga isolat bakteri yang membentuk zona  bening  (Gambar  3).  Isolat  NK  4  memiliki  indeks selulolitik  terbesar  dengan  nilai  9  dan  isolat  NK  3  dan TKK  18  memiliki  indeks  selulolitik  terkecil  terlihat pada Tabel 1. Bajya et al. (2015) menandakan aktivitas selulolitik  tertinggi  dan  terendah  dilihat  dari  diameter zona  bening  yang  memiliki  kemampuan  dalam mendegradasi  selulosa  pada  media  CMC  agar.  Kakkar et al. (2015) melaporkan bakteri selulolitik yang berasal dari  saluran  pencernaan  rayap Odontotermes  parvidens memiliki  indeks  selulolitik  3.0.  Dengan  demikian, kemampuan  bakteri  dalam  menghasilkan  selulase tertinggi mengindikasikan bahwa isolat bakteri memiliki kemampuan  aktivitas  selulolitik.  Upadhyaya et  al . (2012)  juga  melaporkan  bahwa  untuk  setiap  koloni memiliki produksi diameter zona bening  yang berbeda- beda  dan  sebagai  dasar  perbandingan  strain  yang digunakan.  Selanjutnya, ketiga isolat bakteri ini dipilih untuk  pengujian  keefektifan  bakteri  selulolitik  dalam mendekomposisi tunggul karet.

## Karakterisasi Bakteri Selulolitik Asal Saluran Pencernaan Rayap
Sebanyak tiga isolat bakteri menunjukkan karakterisasi morfologi koloni asal rayap sebagian besar berbentuk  bulat  dengan  permukaan  halus  mengkilap,
margin entire ,  serta  elavasi  cembung  dengan  warna koloni  berwarna  putih,  krem  dan  bening.  Pada umumnya  semua  spesies  rayap  memiliki  elevasi cembung (Mubin 2013) (Tabel 2).
Uji  biokimia  untuk  isolat  bakteri  NK  4    dan  NS  4 memiliki hasil yang positif pada motilitas, katalase, dan hidrolisis pati sedangkan hasil negatif pada oksidase dan fermentasi oksidatif. Hal ini sesuai dengan Pourramezan et  al .  (2012)  yang  menghasilkan  katalase  dan  oksidase yang  bersifat  positif  dan  negatif.  Isolat  bakteri  NS  5 memiliki hasil yang positif pada motilitas dan hidrolisis pati.  Katalase,  oksidase,  dan  fermentasi  oksidatif memiliki  hasil  yang  negatif,  hal  ini  diduga  karena bakteri  tersebut  tidak  dapat  mengdegradasi  hidrogen peroksida menjadi oksigen bebas dan tidak menghasilkan  H 2 O 2 atau  H 2 O.  Sunatmo  (2009) melaporkan bahwa akumulasi senyawa dapat menyebabkan  kematian  bila  tidak  segera  didegradasi. Selain  itu,  ketidakmampuan  mikrob  anaerob  mutlak untuk mensintesis katalase, peroksidase atau superoksida dismute  yang  menyebutkan bahwa oksigen bersifat toksis bagi mikrob tersebut.

## Uji Keefektifan Bakteri Selulolitik Terpilih dalam Dekomposisi Tunggul Karet
Pengamatan visual kayu dilakukan untuk melihat pengujian  dekomposisi  tunggul  karet  ke  dalam  biakan bakteri selama tiga bulan. Dari hasil pengamatan terlihat jelas dengan adanya perubahan warna pada kayu akibat biakan  bakteri.  Contoh  uji  tunggul  kayu  yang  telah diserang  bakteri  mengalami  perubahan  warna  menjadi coklat  tua.  Perubahan  warna  pada  contoh  uji  tunggul karet  memperlihatkan  warna  kayu  dari  warna  coklat muda  menjadi  berwarna  coklat  tua.  Perubahan  warna kayu  ditandai  dengan  permulaan  pembusukan,  jarang nampak karena diakibatkan warna dari kayu itu sendiri. Hasil  pengujian  contoh  uji  kayu  menggunakan  metode JSI  K  1571  memperlihatkan  tampilan  warna  kayu berwarna  coklat  dan  sebagian  besar  isolat  bakteri menyelimuti  contoh  uji  kayu  pada  media  pasir  kuarsa.
Tabel 1 Kemampuan selulolitik bakteri terpilih Kode isolat Indeks Selulolitik (IS) NK 3 Tu NK 4 9 NS 4 1.2 NS 5 4.2 TKK 18 Tu Ket : NK = rayap karet ; NS = rayap sawit ; TKK = rayap kayu kering ; Tu = tidak terukur Tabel 2 Karakterisiasi morfologi dan biokimia bakteri selulolitik asal saluran   pencernaan rayap
Karakterisasi Kode isolat NK 4 NS 4 NS 5 Asal isolat Rayap Karet Rayap Sawit Rayap Sawit Morfologi koloni : Warna Krem Putih Bening Bentuk Bulat Tak beraturan Bulat Elavasi Cembung Cembung Rata Margin Rata Rata Rata Permukaan Halus mengkilap Halus mengkilap Halus mengkilap Bentuk sel Streptokokus Kokus Basil Uji Gram + + + Biokimia : Motilitas + + + Katalase + + - Oksidase - - - Hidrolisis pati + + + Fermentasi Oksidatif (OF) - - -
Dengan  ciri  bagian  permukaan  kayu  terdapat  lapisan bakteri  yang  tumbuh  diatas  permukaan  kayu  (Gambar 4).

## Penurunan Bobot Kayu
Standar  pengujian  yang  diterapkan  pada  penelitian ini  adalah  menggunakan  metode  modifikasi  dari  JIS  K 1571.  Pengujian  ini  dilihat  dari  nilai  presentasi penurunan bobot contoh uji ( weight loss ) yang diperoleh dari  hasil  penelitian  di  laboratorium  ( laboratory  test ). Penilaian penurunan contoh uji kayu terhadap tiga isolat bakteri  merupakan  nilai  dari  hasil  pengurangan  contoh uji  kayu  terhadap  bakteri  yang  dilakukan  selama  12 minggu. Pengujian  yang telah dilakukan diperoleh nilai rata-rata  penurunan  bobot  contoh  uji  kayu  oleh  tiga isolat bakteri (Tabel 3).
Tabel  3  memperlihatkan  nilai  rata-rata  penurunan bobot  contoh  uji  kayu  terhadap  tiga  isolat  bakteri berkisar  antara  13.52-18.40%.  Hal  ini  diduga  isolat bakteri  yang  diujikan  memiliki  kemampuan  dalam mendekomposisi  kayu.  Selain  itu,  kayu  karet  memiliki kandungan selulosa yang tinggi sehingga mempengaruhi  presentase  penurunan  bobot  kayu (Herliyana et  al. 2011).  Pada  perlakuan  kontrol memiliki  penurunan  bobot  sebanyak  1.23%,  hal  ini diduga  karena  tidak  diberikan  perlakuan  bakteri sehingga  hasilnya  rendah.  Natalia  (2011)  melaporkan penurunan  bobot  kayu  karet  menggunakan  jamur P. ostreatus memperlihatkan  penurunan  bobot  kayu  karet metode  JSI  arah longitudinal 9.21%  dan  arah cross 10.95%.  Jika  dibandingkan  dengan  penurunan  bobot kayu menggunakan  bakteri memiliki  presentase penurunan  yang  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan menggunakan  jamur  jamur P.  ostreatus .  Hunt  dan
Garratt  (1986)  melaporkan  bahwa  bakteri  tidak mempengaruhi  perubahan  kayu  tetapi  merubah  daya serap kayu terhadap cairan pada kayu. Selain itu, bakteri yang  menyerang  kayu  hanya  menggunakan  senyawa-
senyawa  organik  yang  mudah  dicerna  yang  tersimpan dalam kayu. Sehingga tampilan kayu yang diaplikasikan bakteri  tidak  banyak  berubah.  Hasil  analisis  ragam menunjukkan bahwa pengujian tunggul kayu menggunakan  isolat  bakteri  berpangaruh  nyata  pada presentase penurunan bobot kayu (Tabel 3).

## SIMPULAN DAN SARAN

## Simpulan
Penelitian  ini  menghasilkan  111  isolat  bakteri pencernaan rayap yang berasal dari  kelapa sawit, rayap karet  dan  rayap  kayu  kering  kontruksi.  Sebanyak  31 isolat  yang  merupakan  bakteri  selulolitik.  Tiga  isolat bakteri selulolitik terpilih  yang aman bagi tanaman dan manusia  yaitu    NK  4,  NS  4,  dan  NS  5.  Bakteri selulolitik  NS  4  yang  berasal  dari  rayap  kelapa  sawit mampu mendekomposisi tunggul karet sekitar 18.40%.

## Saran
Perlu  dilakukan  pengujian  di  lapang  terhadap kemampuan  bakteri  selulolitik  asal  pencernaan  rayap dalam dekomposisi tunggul karet.

## DAFTAR PUSTAKA
Baharuddin  AS,  Razak  MNA,  Hock  LS,  Ahmad  MN.
2010. Isolation and characterization of thermophilic  cellulose-producing  bacteria  from empty  fruit  bunches-palm  oil  mill  effluent compost. Americ J Appl Sci . 7(1):56-62.
Bajya DR, Arya D, Ranjith M, Lakharan MC, Raza SK.
2015.  Isolation  and  identification  of  cellulose demoting  symbionts  from  gut  of  subterranean termite, Odontotermes  obesus . Indian  J  Agricul Sci . 85(7):970-2. Chew YM.  2012.  Isolation,  identification  and characterization  of  cellulolytic  bacteria  from  the gut  of  the  termite Bulbitermes  constrictiforms [Tesis].  Malaysia:  Faculty  of  Biosciences  and Bioengineering, Universiti Teknologi Malaysia.
Herliyana EN, Hanifa N, Hadi YS, Arinana, Tsunoda K. 2011. Ketahanan kayu sengon terhadap Pycnophorus  sanguineus dan Pleurotus  djamor untuk  uji  Standar  Nasional  Indonesia  (SNI)  01- 7207.2006. J Silvikultur Tropika . 2(3):171-175.
Hunt  GM,  Garratt  GA.  1986. Pengawetan  kayu .
a b c d
Gambar 4 Tampilan tunggul karet (a) contoh uji kayu hari ke-0, (b) contoh uji kayu minggu ke-12, (c) isolat bakteri yang menyelimuti permukaan contoh uji kayu, dan (d) contoh uji kayu yang sudah dibersihkan dari isolat bakteri
Tabel 3  Rata-rata presentase penurunan bobot tunggul karet dan hasil uji lanjut Duncan Kode Isolat Penurunan Bobot (%) JSI Kontrol 1.23 c NK 4 13.52 b NS 4 18.40 a NS 5 17.88 ab
Diterjemahkan  Jusuf  M.  Akademika  Jakarta  (ID): Pressindo.
Igwo-Ezikpe  MN,  Nwahiri-Ogbu  C,  Oyebamiji  O, Ndukwe  N,  Ilori  MO,  Ogbunugafor  AH.  2013. Tropical cellulolityc bacteria isolated from hindgut of A. evuncifer : Potential candidates for bioconvension  of  lignocellulosic  waste  biomass. J Basic Medical Sci . 1(1):1-6.
[JIS] Japanese Industrial Standards. 2004. Test methods for  determining  the  effectiveness  of  wood preservatives  and  their  performance  requirements. JIS K 1571.
Manurung  L,  Lubis  L,  Marheni,  Dalimunthe  CI.  2015.
Pengujian  berbagai  jenis  bahan  aktif  terhadap penyakit jamur akar putih ( Rigidoporus microporus (Swartz:  Fr.)  di  Areal  Tanpa  Olah Tanah (TOT). J Online Agroekotek . 3(1):168-178. ISSN No. 2337-6597.
Mubin    N.  2014.  Analisis  kekerabatan  rayap  tanah Macrotermes gilvus Hagen (Blattodea: Termitidae) dan  inventarisasi  bakteri  simbionnya  di  Bogor [tesis].  Bogor:  Departemen  Proteksi  Tanaman. Fakultas Pertanian, Institut Petanian Bogor.
Nandika  D,  Rismayadi  Y,  Diba  F.  2015. Rayap  : Biologi  dan  pengendaliannya,  edisi  2 .  Surakarta (ID): Muhammadiyah University Press.
Natalia  DA.  2011.  Jamur  tiram  sebagai  jamur  uji keawetan  alami  kayu  karet  dan  sengon  dengan metode  Standar  Nasional  Indonesia  dan  Standar Industri  Jepang  [Skripsi].  Bogor:  Departemen Silvikultur.  Fakultas  Kehutanan,  Institut  Pertanian Bogor.
Ngangi  J,  Pelealu,  J,  Warouw  J,  Mandey  L.  2013.
Isolation  and  activity  of  cellulolytic  bacteria isolated  from  hindgut  of Odontotermes spa subteran  termite  on  wasian  ( Elmerrelia  celebica L.) an endemic  wood to North Sulawesi. Int J Sci
Engin Invest . 2(22):8-16.
Nogroho  PA.  2012.  Penyiapan  lahan  tanpa  bakar  ( zero burning )  dalam  peremajaan  tanaman  karet  di perkebunan  komersial. Jurnal  Perkebunan  dan Lahan Tropika . 2(2):39-50.
Nogroho  PA,  Istianto.  2009.  Zero  burning  dalam penyiapan  lahan  untuk  perkebunan  karet  di Sumatera  Utara.  [prosiding]. Lokakarya  Nasional Pemuliaan Tanaman Karet . Pusat Penelitian Karet Pradana  AP.  2016.  Konsorsium  bakteri  endofit  sebagai agens biokontrol Nematoda Puru Akar Meloidogye incognita pada  Tomat.  [Tesis].  Bogor:  Sekolah Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor.
Pourramezan  Z,  Ghezelbash  GR,  Romani  B,  Ziaei  S,
Hedayatkhah A. 2012. Screening and identification of  newly  isolated  cellulose-degrading  bacteria from the gut of Xylophagous termite Microcerotermes  diversus (Silvestri). Microbiol . 81(6):736-742.
Rupaedah  B.  2014.  Peranan  fungi  mikoriza  arbuskular dan  rhizobakteri  dalam  meningkatkan  produksi gula  dan  efisiensi  penyerapan  hara  sorgum  manis ( Sorgum  bicolor L.  Moench)  [Disertasi].  Bogor: Program Pascasarjana. Program Studi Ilmu Tanah, Institut Pertanian Bogor.
Sunatmo  TI.  2009. Eksperimen  mikrobiologi  dalam laboratorium . Jakarta (ID) : Ardy Agency.
Suryanto D, Irmayanti, Lubis S. 2007. Karakterisasi dan uji kepekaan antibiotik beberapa isolat
Staphylococcus  aureus dari  Sumatera  Utara. Majalah Kedokteran Nusantara . 40(2):104-107.
Upadhyaya  SK,  Manandhar  AM,  Mainali  H,  Pokhrel AR, Rijal A, Pradhan B, Koirala B. 2012. Isolation and  characterization  of  cellulolytic  bacteria  from gut of termite. Rentech Symp Compend . 1:14-18.