Jurnal Silvikultur Tropika Vol. 06 No. 1. April 2015, Hal 9-14 ISSN: 2086-8227

## PERTUMBUHAN BIBIT
Shorea stenopthera BURCK. F. TERHADAP APLIKASI KOMPOS SERASAH Shorea sp. DAN

## FUNGI Scleroderma columnare

## PADA TANAH LATOSOL
Growth of Shorea stenopthera Burck. F . seed on Application Composting Litter Shorea sp . and Fungi Scleroderma columnare on Latosol Soil
Mohamad Saefudin 1 , Basuki Wasis 1 dan Erdy Santoso 2
1 Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan, IPB
2 Badan Penelitian, Pengembangan dan Inovasi, Kementerian Lingkungan Hidup dan Kehutanan

## ABSTRACT
Growth of Shorea stenopthera Burck. F. seed can naturally be associated with fungi Scleroderma columnare . A fall composting  litter  can  accumulate  on  the  floor  of  forest  naturally,  litter  piles  thickness  affect  the  presence  of  fungi Scleroderma columnare that situated in the field around the trees rooting of Shorea stenopthera Burck. F. This research aims  to  examined  the  role  of Scleroderma  columnare fungi  inoculation  and  the  addition of  litter  against  the  growth of seedlings  of Shorea  stenopthera Burck.  F.  The  treatments  are  designed  using  two  factorials  of  completely  randomized design  for  compost  and  fungi Scleroderma  columnare .  Compost  factor  consist  of  three  levels,  without  compost,  pure compost,  and  chopped  compost.  Fungi  factor  consist  of  two  levels,  with  addition  and  without  addition  of Scleroderma columnare .  The  treatments  repetition  is  30  times,  and  observation  data  is  analyzed  by  Duncan  test  (with  95%  of confidence level), and test of variance for studying the interaction among diverse treatments. The results of the analysis gives  significant  difference  between  sample  with  treatment  and  sample  without  treatment  (A0B0).  Treatment  A1B0 (chopped compost; without scleroderma) has the best response to the height of tree, trunk diameter, weight of wet leaf, and  weight  of  stalks. Treatment A2B1  (pure  compost;  Scleroderma)  showed  the  significant  influence  to  the  sum  of  wet trunks  and  percentage  of  colony.  Treatment  A0B1  (without  compost; Scleroderma  columnare )  showed  the  significant difference on weight total of root against any other treatments.
Key words : fungi Scleroderma columnare, litter , Shorea stenopthera Burck. F.

## PENDAHULUAN
Shorea  stenopthera Burck.  F.  merupakan  pohon yang  mendominasi  di  hutan  hujan  tropis  ( tropical  rain forest ).  Pohon Shorea  stenopthera Burck.  F.  memiliki pertumbuhan yang lambat sehingga semakin lama daun berjatuhan  ke  lantai  hutan  akan  semakin  tinggi penumpukan  serasah.  Serasah  merupakan  sisa-sisa  dari tumbuhan  yang  berada  pada  lapisan  teratas  dari permukaan  tanah  yang  teridiri  atas  sisa  tumbuhan (Millilo et al .1982). Sisa tumbuhan akan terdekomposisi menjadi  partikel  lebih  kecil  yang  mudah  diserap  oleh tanaman  (Vitovsek et  al .  1994).  Serasah  yang terdekomposisi secara alami setelah 9 bulan (Osono dan Takeda 2002).
Serasah  berjatuhan  dilantai  hutan  salah  satu  jalur hara  dalam  siklus  produksi  hutan  (Hindersah  dan Simarmarta  2004).  Produksi  hara  dalam  hutan tergantung  pada  kecepatan  dekomposisi  dikarenakan tanaman  membutuhkan  ketersediaan  unsur  hara  yang cukup  dan  seimbang.  Hal  ini  terjadi  keseimbangan diindikasikan  oleh  banyaknya  mikroba  yang  dapat mendekomposisikan  serasah  dengan  cepat  (Patel et  al . 2013; Rao 2011).
Usaha  untuk  memaksimalkan  siklus  hara  dengan memanfaatkan mikroorganisme sebagai pengurai
(dekomposisi)  bahan  organik  salah  satunya  dengan aktifator  EM4  ( Efective  Microorganism  4 ).  Higa  dan Widadana (1993) mengemukakan bahwa aktifator EM4 dapat  mempercepat  proses  dekomposisi  bahan  organik dari 3 bulan menjadi 7-14 hari. Aktifator ini merupakan formula  yang  mengandung  13  jenis  mikroorganisme, salah satunya adalah bakteri dan fungi. Mikroorganisme yang  terpilih  ini  bekerja  secara  sinergik  dalam  proses dekomposisi  sehingga  senyawa  organik  dapat  diserap oleh akar tanaman.
Dekomposisi dengan cepat dapat membantu keberadaan  fungi  di  bawah  tegakan  pohon Shorea stenoptera Burck.  F.  Selain  itu  juga  dapat  membantu proses  perkecambahan  benih  yang  berjatuhan  di  lantai hutan.  Siklus  unsur  hara  memiliki  hubungan  simbiosis dengan fungi (Smith dan Read 2008), keberadaan fungi di area perakaran untuk  membantu pertumbuhan pohon Shorea stenoptera Burck. F. (Das dan Patel 2011). Pemanfaatan  kompos  serasah  shorea  dengan menggunakan  percepatan  EM4  memberikan  hasil  lebih baik terhadap pertumbuhan, biomassa tanaman. Pemanfaatan  kompos  utuh  dengan  fungi Scleroderma columnare memberikan hasil lebih baik terhadap jumlah daun,  berat  basah  batang  dan  presentase  koloni. Pemberian  3  ml  tanpa  memberikan  kompos  dapat meningkatkan  hasil  berat  total  akar.  Yumandhany
(2012)  menyatakan  bahwa  penambahan  fungi  pada pupuk  organik  mampu  memperbaiki  struktur  tanah, menambah  aktivitas  biologi  dan  penambahan  N  bebas dari  atmosfer,  serta  melarutkan  P  dan  K  pada  media tumbuh.    Hal  ini  memberikan  harapan  bahwa keberadaan  fungi  dibawah  tegakan  memberikan  peran baik terhadap kebutuhan hara. Oleh karena itu penelitian mengenai  hubungan  simbiosis  antara  benih  berjatuhan dilantai hutan, serasah dan keberadaan fungi diperakaran penting untuk dikaji.

## Tujuan Penelitian
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengkaji  peran inokulasi  fungi Scleroderma  columnare dan  pemberian kompos  terhadap  pertumbuhan  bibit Shorea  stenoptera burck. F.

## BAHAN DAN METODE

## Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian dilakukan pada tanggal April 2013 sampai Juni  2014.  Pengambilan  serasah  meranti Shorea stenoptera Burck. F. dan fungi Scleroderma  columnare dilakukan  di  Kebun  Percobaan  Dramaga  (Gambar  1). Pengomposan  dilakukan  di  Pusat  Penelitian  dan Pengembangan Konservasi dan Rehabilitasi.
Pengambilan  Benih Shorea  stenoptera Burck.  F.  di Kebun Penelitian Haurbentes Jasinga Bogor. Pengambilan sampel tanah di lahan IPB Dramaga.

## Bahan dan Alat Penelitian
Bahan  yang  digunakan  yaitu  kompos  serasah ( Shorea  stenoptera Burck.  F.),  Aktifator  EM4,  Fungi Scleroderma  columnare ,  Tanah  Latosol,  Karung  goni ukuran  70x110  cm.  Alat  polybag  ukuran  15x20  cm, thermometer  dan  hygrometer,  digital  caliper,  soil  pH meter,  penggaris,  pipet,  autoclaf,  timbangan  analitik, pipet ukur, mikroskop.

## Metode
Penelitian  dirancang  menggunakan  analisis  RAL  2 Faktorial  yaitu  faktor  kompos  dan  fungi Scleroderma columnare .  Faktor  kompos  terdiri  dari  3  taraf  yaitu tanpa  kompos,  kompos  utuh,  kompos  cacah  sedangkan faktor  fungi Scleroderma  columnare terdiri  dari  2  taraf yaitu  pemberian Scleroderma  columnare dan  tanpa
Scleroderma
columnare . Perlakuan dilakukan pengulangan  sebanyak  3  kali  ulangan  tanaman.  Total satu perlakuan sebanyak 30 kali ulangan tanaman.

## Pelaksanaan Penelitian di Lapangan
Pengomposan. Pengomposan  dilakukan  dengan membuat  potongan  daun Shorea  stenoptera burck.  F menjadi  berukuran  0.7-1  cm 2 dan  dibuat  tumpukan setinggi  25  cm.  Pada  pembuatan  kompos  tersebut dilakukan  pengukuran  beberapa  parameter  meliputi kesusutan  (cm),  jumlah  polulasi  bakteri,  kelembaban, suhu,  dan  pH  selama  2  minggu  (Sallata et  al .  1990). Populasi  bakteri  yang  jumlah  populasinya  teringgi dilakukan analisis molekuler untuk mengetahui jenisnya.
Persiapan  tanah. Pengambilan  tanah  dilakukan  di IPB  Dramaga  dan  tanah  dilakukan  pengayakan  hingga mendapatkan  partikel  tanah  yang  seragam.  Tanah  yang sudah  seragam  ukuran  partikelnya  dilakukan  sterilisasi dengan menggunakan autoclaf pada suhu 105 o C selama 8 jam (Sulaeman et al . 2005) Penyapihan .  Benih Shorea  stenoptera Burck.  F. diambil di Kebun Percobaan Haurbentes Jasinga Bogor. Benih  direndam  dengan  menggunakan  air  biasa bertujuan untuk membersihkan kotoran. Tahap selanjutnya  menyeleksi  benih  dengan  melihat  bentuk fisik  masih  baik  dan  ukuran  seragam.  Penyeleksian selesai,  benih  disetrilisasi  dengan  menggunakan fungisida  selama  2  jam  bertujuan  untuk  mengeluarkan bahan  organik  yang  menempel  pada  benih.  Benih disemai pada tanah dalam keadaan steril selama 1 bulan.
Penanaman. Benih berumur 1 bulan di seragamkan tinggi tanaman. Penanaman benih dengan menggunakan polybag berukuran 10x15 cm.
Komposisi  Fungi. Fungi Scleroderma  columnare ditimbang 0,15 gram kemudian dicampur dengan air 0,3 liter  dengan  3  tetes  polyoxthylen  sorbitan  monolaurat, aduk  komposisi  fungi  sampai  rata.  Suspensi  spora tersebut digunakan pada 150 bibit (SNI 2006). Menurut Brundreet et  al .  (2005)  perhitungan  fungi Scleroderma columnare dilakukan dengan rumus:
Keterangan:
Ʃ = jumlah
PAT   = panjang akar terinfeksi PATT  = panjang akar tidak terinfeksi.
Analisis  Histologi. Analisis  histologi  akar  dengan menggunakan  Metode  Saas  (1958),  Metode  ini  dimulai dengan fiksasi akar  menggunakan FAA  selama 24 jam, diteruskan  dengan  proses  dehidrasi  yaitu  upaya pengeluaran air dari dalam jaringan tanaman, proses ini menggunakan  alkohol.  Proses  selanjutnya  adalah praparafinasi  yang  bertujuan  menghilangkan  alkohol dari  jaringan  tanaman  agar  dapat  diisi  oleh  parafin, proses  ini  menggunakan  alkohol  100%  dan  Xylol dengan  beberapa  tahap.  Proses  parafin  dengan kosentrasi berbeda-beda dengan empat tahap dan selama 24 jam, dalam  strectcher ( hot plate ) suhu 55ºC. Teknik pewarnaan  dengan  dilakukan  dalam  19  tahapan. Pewarnaan  yang  digunakan  adalah  safranin  0,5%  dan alcian  blue  1%.  Setelah  keseluruhan  proses  dilakukan maka  preparat  akar  diamati  dibawah  mikroskop  nikon N-STORM  Super  Resolution  Microscope  dengan perbesaran 100 µm.
Parameter yang diamati. Pengamatan pertumbuhan  bibit Shorea  stenoptera Burck.  F.  adalah tinggi tanaman, jumlah daun, diameter, berat basah dan berat kering, persentase akar bermikoriza.

## Analisis data
Pengolahan  data  dengan  menggunakan  SAS  9.0, analisis data pada  perlakuan dengan uji F. Uji lanjutan membandingkan  antar  perlakuan  dengan  menggunakan uji DMRT.
Gambar 1 Lokasi pengambilan Serasah Shorea sp. dan  Fungi Scleroderma columnare
Tabel 1  Perbandingan  pengaruh  antar  kelompok  perlakuan  terhadap  berbagai  komponen  pertumbuhan,  biomassa tanaman dan persentase kolonisasi mikoriza
Perlakuan Peubah Tinggi tanaman (cm) Jumlah daun (helai) Diameter batang (mm) Berat basah daun (g) Berat basah batang (g) Berat kering daun (g) Berat kering batang (g) Berat akar (g) Persentase kolonisasi mikoriza (%) A0B0 x A0B1 Ns Ns Ns ns * * ns * * A0B0 x A1B0 ** * * ** * * ns * * A0B0 X A2B0 * * * ** ns * ns * * A0B0 X A1B1 * Ns Ns * * * ns * * A0B0 X A2B1 * * * * ** Ns ns * * A1B0 X A1B1 * Ns * * * * * ns * A1B0 x A2B0 * Ns Ns * * Ns * * * A1B0 x A2B1 ** * * * * * * ns * A1B1 x A2B0 Ns * * * * * ns * * A1B1 x A2B1 * * * * ns Ns ns ns * A2B0 X A2B1 ** Ns Ns * ** * ns * *
Ket:   A0B0  (tanpa  kompos; tanpa Scleroderma ),  A1B0  (kompos cacah; tanpa Scleroderma ),  A2B0  (kompos  utuh;  tanpa Scleroderma ),  A0B1 (tanpa  kompos; Scleroderma ),  A0B1  (kompos  cacah; Scleroderma ),  A1B1  (kompos  utuh; Scleroderma ).  ns:  Tidak  berbeda  nyata; *: Berbeda nyata (α = 5%).
Tabel 2  Hasil  uji  Ducan  pengaruh  antar  perlakuan  kompos  dan  fungi Scleroderma  columnare terhadap pertumbuhan, biomassa tanaman dan persentase koloni mikoriza
Komponen pertumbuhan dan presentasi mikoriza perlakuan Tinggi tanaman (cm) Jumlah daun (helai) Diameter batang (mm) Berat basah daun (g) Berat basah batang (g) Berat kering daun (g) Berat kering batang (g) Berat akar (g) Persentase kolonisasi mikoriza (%) A0B0 14.13dc 4.66b 4.66b 0.89d 0.68c 0.29b 0.16b 1.14b 0.31c A1B0 21.45a 5.04ba 5.48ba 1.84a 1.13bc 0.43a 0.36a 4.09ba 4.02bc A2B0 18.43b 5.67a 5.67a 1.81ba 0.68c 0.42a 0.19b 4.90ba 5.06bac A0B1 13.49d 5.02ba 4.99ba 1.03d 1.35ba 0.35ba 0.25b 6.20a 14.65bac A1B1 15.05b 5.04ba 5.04ba 1.80bc 1.45ba 0.36ba 0.26b 4.34ba 17.56ba A2B1 14.58dc 13.49d 4.99ba 1.53bc 1.75a 0.38ba 0.21b 4.35ba 24.40a
Ket:   A0B0  (tanpa  kompos; tanpa Scleroderma ),  A1B0  (kompos cacah; tanpa Scleroderma ),  A2B0  (kompos  utuh;  tanpa Scleroderma ),  A0B1 (tanpa kompos; Scleroderma ), A0B1 (kompos cacah; Scleroderma ), A1B1 (kompos utuh; Scleroderma ). daun BB (daun berat basah), daun BK (daun berat kering), batang BB (batang berat basah), batang BK (batang berat kering). Angka yang diikuti huruf yang sama pada lajur yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada α = 5%.
Gambar 2  Kurva  respon  pertumbuhan  bibit Shorea  Stenoptera Burck.  F  selama  4  bulan  setelah  tanam  (MST).  (A)  tinggi tanaman;  (B)  jumlah  daun;  (C)  diameter  (D)  Berat  kering  dan  berat  basah.  A0B1  (tanpa  kompos; Scleroderma ), A0B1  (kompos  cacah:  tanpa Scleroderma ),  A2B0  (kompos  utuh;  tanpa Scleroderma ),  A0B1  (tanpa  kompos; Scleroderma ), A1B1 (kompos cacah; Scleroderma ), A2B1 (kompos utuh; Scleroderma ), daun BB (daun berat basah), daun BK (daun berat kering), batang BB (batang berat basah), batang BK (batang berat kering)
Gambar 3 Penampang akar dengan perbesaran 100 µm: (A) A0B1 (tanpa kompos; scleroderma), (B) A0B1 (kompos cacah:  tanpa  Scleroderma),  (C)  A2B0  (kompos  utuh;  tanpa  Scleroderma),  (D)  A0B1  (tanpa kompos; Scleroderma ), (E) A1B1 (kompos cacah; Scleroderma ), (F) A2B1 (kompos utuh; Scleroderma ). (h) hartig net , (m) mantle , (ree) radial elongation epidermis

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Perlakuan  pada  penelitian  ini  adalah  faktor  kompos terdiri dari 3 taraf yaitu kompos, kompos utuh, kompos cacah  dan  faktor Scleroderma  columnare terdiri  dari  2 taraf yaitu pemberian Scleroderma columnare dan tanpa
Scleroderma columnare . Parameter yang diamati dalam penelitian  ini  adalah  pertumbuhan,  jumlah  daun, diameter,  biomassa  tanaman  dan  persentase  koloni mikoriza. Parameter yang diamati dilakukan uji Duncan untuk  mengetahui  pengaruh  kompos  dan  fungi Scleroderma columnare terhadap pertumbuhan,
0 5 10 15 20 25 1 2 3 4 5 6 7 8 Tin g g i (c m ) Waktu  (Minggu) A0B0 A0B1
A1B0 A2B0
A2B1 A2B1 0 1 2 3 4 5 6 1 2 3 4 5 6 7 8 J um la h da un Waktu  (Minggu) A0B0 A0B1 A1B0 A2B0 A1B1 A2B1 0 1 2 3 4 1 2 3 4 5 6 7 8 D ia m ete r (c m ) Waktu  (Minggu) A0B0 A0B1 A1B0 A2B0 A1B1 A2B1 0 0.4 0.8 1.2 1.6 2 2.4 A0B0 A1B0 A2B0 A0B1 A1B1 B er a t B a sa h d a n B er a t K er in g Perlakuan Daun BB Daun BK Batang BB Batang BK (A) (B) (C) (D) (E) m h m (F) m ree m reec h m m ree h
biomasa  tanaman  dan  persentase  kolonisasi  mikoriza yang diamati dapat disajikan pada Tabel 2. Perbandingan  pengaruh  antar  kelompok  perlakuan terhadap pertumbuhan, biomassa tanaman dan persentase koloni mikoriza dapat disajikan pada tabel 1.
Pengomposan  pada  penelitian  ini  menggunakan serasah Shorea sp.  yang  menumpuk  di  bawah  tegakan pohon Shorea stenoptera Burck. F. Kompos merupakan material  yang  menyediakan  sumber  nutrisi  penting dalam  mendukung  pertumbuhan  dan  perkembangan mikroorganisme.  Ketersediaan  kompos  dan  keberadaan fungi Scleroderma  columnare memiliki  peran  yang berbeda, hubungan antara perlakuan terhadap pertumbuhan,  biomassa  tanaman,  dan  persentase kolonisasi mikoriza dapat disajikan pada Gambar 2.
Perbedaan  pengaruh  dari  antar  perlakuan  terhadap pertumbuhan,  biomassa  tanaman  dan  persentase  koloni mikoriza  pertumbuhan  menunjukan  berbeda  nyata. Perlakuan  A1B0  (kompos  cacah  tanpa Scleroderma ) memiliki  respon  terbaik  terhadap  tinggi  tanaman, diameter  batang,  berat  basah  daun  dan  berat  kering batang (Gambar 2 dan Tabel 2). Hasil ini didukung hasil analisis  kandungan  unsur  hara  N,  P,  K.  Selain  itu, ketersediaan  bahan  organik  yang  dibutuhkan  tanaman sudah tercukupi. Bahan organik ini berfungsi membantu proses  penggemburan  tanah.  Bahan  yang  diserap  oleh tanaman  memiliki  rasio  C/N  10-18%  (SNI  2006). Berdasarkan  hasil  analisis  kompos  pada  penelitian  ini menunjukkan nilai rasio C/N sebesar 10-13%.
Hasil  analisis  kandungan  unsur  hara,  menunjukan bahwa  rata-rata  N  tersedia  antar  perlakuan    sebesar  0,3 ppm/g/tanaman.  Nilai  rata-rata  serapan  unsur  hara  P tersedia  sebesar  80  ppm/g/tanaman.  Hasil  analisis kandungan,  mengindikasikan  tanaman  dapat  menyerap unsur  hara  dengan  baik.  Unsur  hara  diserap  ke  dalam jaringan  korteks  untuk  perkembangan  batang,  dan proses  pembentukan  sumbu  daun  (tonjolan  kerucut) (Srivantava  2002).  Selain  itu  dibantu  oleh  daun  aktif melakukan  fotosintesis,  suplai  energi  ini  digunakan untuk pertumbuhan tajuk tanaman.
Pertumbuhan  bibit Shorea  stenoptera Burck.  F. selama  4  bulan,  pada  perlakuan  A2B1  (kompos  utuh; Scleroderma )  menunjukkan  pengaruh  nyata  terhadap jumlah  daun  berat  basah  batang  dan  persentase  koloni. Perkembangan  dari  perlakuan  A2B1  (kompos  utuh; Scleroderma )  dapat disajikan pada Gambar 2 dan Tabel 2.  Hal  ini  terjadi  karena  adanya  hubungan  simbiosis mutualisme  dalam    mendapatkan  nutrisi  di  lingkungan yang ekstrim. Keberadaan fungi Scleroderma columnare membantu  awal  adaptasi  tanaman.  Akar yang  terinfeksi  oleh  hifa  yang  berwarna  putih  akan terbentuk selubung hartig. Perkembangan hifa Scleroderma  columnare seiring  dengan  aktifnya  akar dalam  menyerap  nutrisi  di  media  tanam.  Selain  itu selubung hifa yang tebal berwarna putih dapat mengikat oksigen  dan  enzim  phospatase  (Marschner  1991). Kompos utuh berperan untuk memperbaiki media tanam menjadi lebih lunak sehingga akar mudah mendapatkan nutrisi dan air.
Akar  yang  terinfeksi  oleh  fungi Scleroderma columnare akan  memberikan  ruang  jelajah  akar  lateral yang  lebih  luas  (Lin et  al .  2012).  Perlakuan  A0B1 (tanpa  kompos; Scleroderma  columnare )  menunjukan
pengaruh  terhadap  total  berat  akar.  Mekanisme  ini terjadi  adanya  sentuhan  akar  belum  bermikoriza sehingga  terjadi  perubahan  morfologi  akar  maupun perkembangan  inang.  Histologi  akar  bibit Shorea stenoptera Burck.  F.  terinfeksi  fungi Scleroderma columnare selama 4 bulan dapat disajikan pada Gambar 3.
Histologi akar antar perlakuan terhadap infeksi fungi Scleroderma  columnare tidak  menunjukan  pengaruh nyata  (Gambar  3).  Hal  ini  dikarenakan  fungi Scleroderma  columnare memilih  untuk  memperbaiki struktur media tumbuh (Patterson et al . 2004) . Menurut Melin  (1963)  fungi Scleroderma  columnare dalam keadaan  kondisi  ekstrim  terjadi  transportasi  ion  saat mendapatkan nutrisi dan air (Molina et al . 1991).

## KESIMPULAN
Perlakuan A1B0 (kompos
cacah; tanpa Scleroderma )  memiliki  respon  terbaik  terhadap  tinggi tanaman,  diameter  batang,  berat  basah  daun  dan  berat kering  batang.  Perlakuan  A2B1  (kompos  utuh; Scleroderma )  menunjukan  berpengaruh  nyata  terhadap jumlah  daun  berat  basah  batang  dan  presentase  koloni. Perlakuan A0B1 (tanpa kompos; Scleroderma ) terhadap total  berat  akar  berbeda  nyata  dibanding  dengan perlakuan lainnya.

## DAFTAR PUSATAKA
Bundreet M, Bougher N, Dell B, Grove T, Malajezuk N. 1996.  Working  with  mycorrhiza  in  forestry  and agriculture. Canberra: Australian Centre for International Agricultural Research.
Das A, Patel GG. 2011. Conversion of farm wastes by- products  into  enriched  compost  through  use  of microbial  consortium. Journal  An  Asian  Journal  of Soil Science. 6(2):195-199.
Hindersah  R,  Simarmata  T.  2004.  Potensi  rhizobacter dalam  meningkatkan  kesehatan  hutan. Jurnal Natural Indonesia . 5 (2):127-133.
Higa T. 1994. EM and the role in kyusei nature farming and  sustainable  agriculture.  First  International conference  of  effective  microorganisms  (EM)  on kyusei  nature  farming. Proceeding  of  conference  at Khon Kaen University . Thailand: hal 1-6.
Lin  HH,  Chen  YS,  Li  YC,  Tseng  IL,  Hsieh  TH,  Buu Leh  M.  2012.  Burkholderia  multivorans  acts  as  an antagonist  against  the  growth  of burkholderia pseudomallei in  soil.  Biotechnology:  University Kaoslung Taiwan.
Marschner  H.  1991.  Nutrien  dynamics  at  the  soil  root and mycorrhizas in ecosystem. Cambridge: International University Press.
Melin  E.  1963.  Some  effects  of  forest  tree  roots  on myocrrhyzal  basidiomycetes.  London:  Cambrige University Press.
Molina  RH,  Massicotte,  Trappe  JM.  1991.  Ecological role  of  specificaty  phenomena  in  ectomycorrhizal plant  communities  potentials  for  interplant  linkages
and  guild  development.  Cambridge:  International University Press.
Osono  T,  Takeda  H.  2002.  Comparison  of  litter decomposing  ability  among  diverse  fungi  in  cool temperate  deciduous  forest  in  Japan. J.  Mycol. 94:421-427.
Patel  PH,  Patel  JP,  Bhatt  SA.  2013.  Characterization and phylogenetic relatedness of azotobacter salinetris. J.  Microbiology  and  Biotechnology.
12:324-421.
Petterson  RL,  Massicotte  HB  and  Melvielle  LH.  2004.
Mycorrhiza:  anatomy  and  cell  biology.Ottawa.NRC Reserch Press.
Rao  S.  2011.  Soil  microorganisms  and  plant  growth, oxford  and  ibh  publishing  co.  India. J.Hemidia 2:1- 4.
Smith SE, Read DJ. 2008. Mycorrhizal symbiosis. Third Edition.London: Academic Press.
[SNI]. 2006. Produksi inokulan cendawan ektomikoriza untuk bibit tanaman kehutanan
Sulaeman,  Suparto,  Eviati.  2005.  Petunjuk  teknis analisis tanah, tanaman, air, dan pupuk. Bogor: Balai Penelitian Tanah, Badan Penelitian dan Pengembangan  Pertanian,  Departemen  Pertanian,
Bogor.
Srivastava  LM.  2002.  Plant  growth  and  developmen hormones  and  environment.  London:  Academic Press.
Sallata  M,  Kudeng,  Halidah.  1990.  Produksi  dan penghancuran serasah di bawah hutan alam sekunder di  tabo-tabo  sulawesi  selatan. J.  Penelitian Kehutanan. 3:19-25.
Sass JE. 1958. Botanical microtechnique. Third Edition. Lowa State Univ. Press. USA.
Yusmandhany ES. 2001. Teknik pemberian biofertilizer EMAS  pada  tanah  podsolik  (PMK)  Rangkasbitung. Bul Tek Pert. 7:30-32.