## PENDAHULUAN
Kentang merupakan tanaman semusim hortikultura yang memiliki kandungan  karbohidrat,  kalori,  mineral, vitamin  dan  dapat  dijadikan  salah  satu pangan  pokok  pengganti  beras.  Kentang cocok pada iklim tropis termasuk Indonesia,  oleh  karena  itu  banyaknya masyarakat yang membudidayakan tanaman  kentang.  Di  Indonesia  kentang banyak  dibutuhkan  dalam  kalangan  rumah tangga sering dijadikan olahan sayuran dan
juga kentang bisa diolah menjadi makanan ringan  atau  jajanan.  Produksi  tanaman kentang  di  Indonesia  menurut  data  BPS pada  tahun  2020  sebanyak  1 .282 .768,00 ton dan mengalami peningkatan pada tahun 2021 meningkat menjadi 1 .361 .064,00 ton
(Badan Pusat Statistik, 2021).
Tanaman  kentang  mempunyai  nilai ekonomis  yang  lumayan  tinggi  dan peminatnya yang cukup banyak, menjadikan  kentang  ini  salah  satu  mata pencarian masyarakat karna

## GROWTH OF
POTATO SEEDS  (Solanum  tuberesum L.) ON MS MEDIA SUBSTITUTED

## WITH COCONUT WATER
Pertumbuhan  Plantlet  Kentang (Solanum  tuberosum  L)  Pada Media  MS  yang  Disubtitusi Dengan Air Kelapa
Edy Fredy Lengkong, Hizkia Mantiri, Arthur Gehart Pinaria.
Program  Studi Agroteknologi  Fakultas Pertanian,  Universitas  Sam  Ratulangi, Manado
*Corresponding author: edylengkong@unsrat.ac.id

## ***
Manuscript received: 9 June 2023. Revision accepted: 7 July 2023.

## Abstract
The tissue culture technique can be the best method of choice because it is fast in propagation and has a relatively short time. This  research was conducted  using  a  completely  randomized  design,  with  4  treatments, namely:  P0.  MS  Media  100%,  P1.  MS  Media  90%  +  10%  Coconut Water, P2. MS Media 80% + 20 Coconut Water, P3. MS Media 70% + 30% Coconut Water. Each treatment was repeated 10 times to obtain 40 experimental  units  and  in  each  experimental  unit/bottle,  there  were  2 shoot explants.
The  results  of  the  study  that  the  substitution  of  Coconut  Water  in  MS Media  had  a  significant  effect  on  plant  height  parameters  but  had  no significant  effect  on  parameters  of  number  of  leaves,  number  of  roots, number of branches, and dry weight of potato plantlets. The best use of coconut  water  as  a  substitute  for  MS  media  for  the  growth  of  potato plantlets is at a concentration of 30%. because it did not differ from the control  (100%  MS  media),  especially  the  parameters  of  the  number  of leaves,  number  of  roots,  number  of  branches,  and  dry  tissue  of  potato plantlets.

## Keywords: Potato Seeds, MS Media, Coconut water

## Abstrak
Teknik  kultur  jaringan  dapat  menjadi  pilihan  metode  terbaik  karena cepat  dalam  perbanyakannya  dan  memiliki  waktu  yang  relatif  singkat. Penelitian ini dilakukan dengan menggunakan rancangan acak lengkap, dengan 4 perlakuan yaitu: P0. MS Media 100%, P1. MS Media 90% + 10% Air Kelapa, P2. MS Media 80% + 20 Air Kelapa, P3. MS Media 70%  +  30%  Air  Kelapa.  Setiap  perlakuan  diulang  sebanyak  10  kali sehingga  diperoleh  40  satuan  percobaan  dan  pada  setiap  satuan percobaan/botol  terdapat  2  eksplan  pucuk.  Hasil  penelitian  bahwa substitusi  Air  Kelapa  pada  Media  MS  berpengaruh  nyata  terhadap parameter  tinggi  tanaman  namun  tidak  berpengaruh  nyata  terhadap parameter  jumlah  daun,  jumlah  akar,  jumlah  cabang,  dan  berat  kering planlet  kentang.  Pemanfaatan  air  kelapa  sebagai  pengganti  media  MS untuk  pertumbuhan  planlet  kentang  yang  terbaik  adalah  pada konsentrasi  30%.  karena  tidak  berbeda  dengan  kontrol  (media  100%
MS) terutama pada parameter jumlah daun, jumlah akar, jumlah cabang, dan jaringan kering planlet kentang. Kata Kunci : Benih Kentang, MS Media, Air Kelapa

## JURNAL  AGROEKOTEKNOLOGI TERAPAN
Applied Agroecotechnology Journal
Agroteknologi Universitas Sam Ratulangi
e_ISSN:2797-0647
pengolahannya  yang  mudah  dan  cepat, maka  dari  itu  pentingnya  ketersediaan benih  yang  unggul  dan  sehat,  disisi  lain untuk  menyediakan  benih  kentang  yang bermutu  baik,  banyak  pengaruh  aspek penghalang  seperti  pertumbuhan  yang lambat  dan  juga  rentan  untuk  terserang penyakit  yang  menyebabkan  menurunnya ketersediaan  hasil  panen.  Kentang  dapat diperbanyak secara generatif menggunakan biji  dan  secara  vegetatif  dengan  umbi. Namun  metode  perbanyakan  ini  memiliki kelemahan  seperti  tingkat  multiplikasi dalam  kultur  jaringan  yang  rendah  dan beresiko  tinggi  adanya  berbagai  penyakit (Mohapatra dan Batra, 2017).
Kultur  jaringan  tanaman  merupakan teknik  menumbuh  kembangkan  bagian tanaman,  baik  berupa  sel,  jaringan,  atau organ dalam kondisi aseptik secara in vitro (Marpaung,R.G, dkk
2019).
Pengembangan teknik kultur jaringan telah menjadi  dasar  dalam  tanaman  berkualitas tinggi,  bebas  penyakit  pada  skala  masal, terutama  pada  tanaman  yang  diperbanyak secara vegetatif (Kaur et al., 2015).
Keberhasilan  dalam  menggunakan teknik kultur jaringan dalam menghasilkan bibit  unggul  dan  steril,  tidak  terlepas  dari ketergantungan pada media yang digunakan.  Media  ( Murashige  dan  Skoog) (MS)  adalah  media  yang  paling  banyak digunakan  dalam  pembuatan  media  untuk kultur  jaringan  dikarenakan  media  MS  ini memiliki  kandungan  yang  cukup  banyak untuk  menyokong  dalam  pertumbuhan plantlet,  kandungan  nutrisi  yang  dimiliki seperti  nitrat,  kalium,  dan  amonium  yang tinggi,  kandungan  ini  yang  menjadi  alasan mengapa  media  MS  ini  paling  banyak dalam  pembuatan  media,  atas  kelebihan media MS ada juga kendala dari media MS tersebut  adalah  relatif  mahalnya  media yang  ada di pasaran.
Untuk  mengurangi  ketergantungan penggunaan media MS dengan
memodifikasi  media  menggunakan  air kelapa muda, dengan banyaknya
ketersediaan air kelapa muda di masyarakat dan harganya yang lebih murah dibandingkan  dengan  MS,  maka  dapat meminimalkan pengunaan MS dan menghemat  pembiayaan  dalam  kultur jaringan.  ZPT  alami  dapat  diperoleh  dari berbagai buah-buahan salah satu diantaranya  adalah  air  kelapa  (Seswita 2010). Kandungan ZPT yang berada dalam air  kelapa  berguna  sebagai  pembentukan sel  tanaman  dan  meningkatkan  respon tumbah  dan  multiplikasi  tunas.  Nutrisi pada  air  kelapa  yang  dibutuhkan  planlet adalah  asam  amino,  gula,  asam  organik dan vitamin.

## Tujuan Penelitian
Menganalisis  pengaruh  subtitusi  air kelapa  terhadap        pertumbuhan  planlet kentang dan mengetahui jumlah konsentrasi air kelapa yang terbaik sebagai subtitusi  media  MS  pada  pertumbuhan plantlet

## METODOLOGI PENELITIAN
Penelitian ini dilaksanakan di
Laboratorium
Genetika, Fakultas Pertanian,  Universitas  Sam  Ratulangi. Waktu  pelaksanaanya  dilakukan  selama  3 (tiga) bulan yaitu pada bulan Januari-Maret 2023.  Bahan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  plantlet  kentang varietas  granola,  media  pabrikan  MS, bubuk agar-agar, gula pasir, kelapa varietas Dalam Mapanget umur (6) bulan, aquades, alkohol  70%,  alkohol  95%,  plastik,  karet gelang. Sedangkan alat yang akan digunakan  berupa  timbangan,  laminar  air flow, autoclaf, oven, penggaris, gelas ukur, elmeyer, patridis, gunting, pinset, handsprayer, rak Kultur, sendok, PH meter, baju lab dan alat tulis.

## Metode Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  dengan menggunakan  metode  Rancangan  Acak Lengkap, dengan 4 perlakuan, yaitu: P0. Media MS 100 % P1. Media MS 90 % + 10 % Air Kelapa
P2. Media MS 80 % + 20 Air Kelapa P3. Media MS 70 % + 30 % Air Kelapa Setiap perlakuan diulang sebanyak 10 kali  sehingga  diperoleh  40  unit  satuan percobaan    dan  dalam  setiap  unit percobaan/botol berisi 2  eksplan pucuk.

## Mekanisme Penelitian
Sterilisasi alat
Peralatan untuk kultur jaringan seperti  botol  kultur,  gelas  ukur,  elmeyer, patridis,      gunting,  pinset,  sendok,  alat dicuci dengan sabun, dibilas, lalu dikeringkan,    setelah  alat  –  alat  sudah kering,  lalu  dibungkus  menggunakan kertas  (kecuali  botol  kultur    dan  gelas ukur).  Alat  tersebut  disusun  didalam autoklaf lalu di kunci rapat dan  disterilkan pada  suhu  121  °  tekanan  1,5    psi      selama 45 menit.
Proses pembuatan media sebagai berikut :

## Media P0 MS 100%
Siapkan  bahan  dan  alat  untuk pembuatan,  untuk  bahan  media  MS pabrikan,  agar  –  agar,  aquades,  gula,  dan alat  yaitu  gelas  ukur,  elmeyer,  sendok, timbangan,  petridis,  panci,  dan  kompor. Pertama  timbang  media  MS  sebanyak  4,4 gr,  media  MS  tersebut  kedalam  wadah backer glass dan larutkan dengan aquades sebanyak  750  ml  setelah  larut  masukan gula  sebanyak  30  gr  larutkan  dengan  cara diaduk,  selanjutnya  atur  pH  larutan menggunakan alat ukur pH meter,   jika pH larutan  kurang  dari  5,8  maka  tambahkan sedikit demi sedikit NaoH hingga mencapai  pH  5,8  ,  namun  jika  lebih  dari 5,8  maka  tambahkan  sedikit  demi  sedikit HCl,  hingga  mencapai  angka  pH  5,8.
Selanjutnya  tambahkan  aquades  sehingga mencapai    1000  ml,  media  tersebut selanjutnya dimasak dalam  panci,  sebelum mendidih  ditambahkan  secara  perlahan agar-agar  sebanyak  8  gram  sambil  diaduk hingga  mendidih.    Media  yang  sudah
matang  tersebut  selanjutnya  dimasukan dalam  botol  kultur,  masing-masing  25 ml/botol,  selanjutnya  botol  ditutup  dengan plastik bening yang diikat ketat menggunakan  karet  gelang.    Botol-botol kultur  yang  sudah  terisi  media  tersebut selanjutnya di sterilkan menggunakan auto clave  pada  tekanan  1.5  Psi  selama  20 menit.  Media  yang  telah  distrilisasi tersebut  selanjutnya  dimasukan  ke  dalam ruang  kultur  dan  siap  digunakan  untuk kegiatan penelitian.

## Media P1 MS 90% + 10% Air kelapa
Siapkan  bahan  dan  alat  untuk pembuatan,  untuk  bahan  media  MS pabrikan,  agar  –  agar,  aquades,  gula,  dan alat  yaitu  gelas  ukur,  elmeyer,  sendok, timbangan,  petridis,  panci,  dan  kompor. Pertama timbang media MS sebanyak 3,96 gr,  media  MS  tersebut  kedalam  wadah backer glass dan larutkan dengan aquades sebanyak  800  ml  setelah  larut  masukan gula  sebanyak  30  gr  larutkan  dengan  cara diaduk  kemudian  masukan  air  kelapa sebnayak  100  ml,  selanjutnya  atur  pH larutan  menggunakan  alat  ukur  pH  meter, jika  pH  larutan  kurang  dari  5,8  maka tambahkan  sedikit  demi  sedikit  NaoH hingga mencapai pH 5,8 , namun jika lebih dari  5,8  maka  tambahkan  sedikit  demi sedikit  HCl,  hingga  mencapai  angka  pH 5,8. Selanjutnya tambahkan aquades sehingga  mencapai    1000  ml.  Media tersebut  selanjutnya  dimasak  dalam  panci, sebelum  mendidih  ditambahkan  secara perlahan agar-agar sebanyak 8 gram sambil diaduk  hingga  mendidih.    Media  yang sudah matang tersebut selanjutnya dimasukan  dalam  botol  kultur,  masing- masing  25  ml/botol,  selanjutnya  botol ditutup  dengan  plastik  bening  dan  diikat ketat  menggunakan  karet  gelang.    Botol- botol  kultur  yang  sudah  terisi  media tersebut selanjutnya di sterilkan menggunakan  auto  clave  pada  tekanan  1.5 Psi  selama  20  menit.  Media  yang  telah distrilisasi  tersebut  selanjutnya  dimasukan
ke  dalam  ruang  kultur  dan  siap  digunakan untuk kegiatan penelitian

## Media P2 MS 80% + 20% Air kelapa
Siapkan  bahan  dan  alat  untuk pembuatan,  untuk  bahan  media  MS pabrikan,  agar  –  agar,  aquades,  gula,  dan alat  yaitu  gelas  ukur,  elmeyer,  sendok, timbangan,  petridis,  panci,  dan  kompor. Pertama timbang media MS sebanyak 3,52 gr,  media  MS  tersebut  kedalam  wadah backer glass dan larutkan dengan aquades sebanyak  700  ml  setelah  larut  masukan gula  sebanyak  30  gr  larutkan  dengan  cara diaduk  kemudian  masukan  air  kelapa sebanyak  200ml,  selanjutnya  atur  pH larutan  menggunakan  alat  ukur  pH  meter, jika  pH  larutan  kurang  dari  5,8  maka tambahkan  sedikit  demi  sedikit  NaoH hingga mencapai pH 5,8 , namun jika lebih dari  5,8  maka  tambahkan  sedikit  demi sedikit  HCl,  hingga  mencapai  angka  pH 5,8. Selanjutnya tambahkan aquades sehingga  mencapai    1000  ml.  Media tersebut  selanjutnya  dimasak  dalam  panci, sebelum  mendidih  ditambahkan  secara perlahan agar-agar sebanyak 8 gram sambil diaduk  hingga  mendidih.    Media  yang sudah matang tersebut selanjutnya dimasukan  dalam  botol  kultur,  masing- masing  25  ml/botol,  selanjutnya  botol ditutup  dengan  plastik  bening  dan  diikat ketat  menggunakan  karet  gelang.    Botol- botol  kultur  yang  sudah  terisi  media tersebut selanjutnya di sterilkan menggunakan  auto  clave  pada  tekanan  1.5 Psi  selama  20  menit.  Media  yang  telah distrilisasi  tersebut  selanjutnya  dimasukan ke  dalam  ruang  kultur  dan  siap  digunakan untuk kegiatan penelitian.

## Media P3 MS 70% + 30% Air kelapa
Siapkan  bahan  dan  alat  untuk pembuatan,  untuk  bahan  media  MS pabrikan,  agar  –  agar,  aquades,  gula,  dan alat  yaitu  gelas  ukur,  elmeyer,  sendok, timbangan,  petridis,  panci,  dan  kompor. Pertama timbang media MS sebanyak 3,08
gr,  media  MS  tersebut  kedalam  wadah backer glass dan larutkan dengan aquades sebanyak  600  ml  setelah  larut  masukan gula  sebanyak  30  gr  larutkan  dengan  cara diaduk  kemudian  tambahkan  air  kelapa sebanyak  300ml,  selanjutnya  atur  pH larutan  menggunakan  alat  ukur  pH  meter, jika  pH  larutan  kurang  dari  5,8  maka tambahkan  sedikit  demi  sedikit  NaoH hingga mencapai pH 5,8 , namun jika lebih dari  5,8  maka  tambahkan  sedikit  demi sedikit  HCl,  hingga  mencapai  angka  pH 5,8. Selanjutnya tambahkan aquades sehingga  mencapai    1000  ml.  Media tersebut  selanjutnya dimasak dalam panci, sebelum  mendidih  ditambahkan  secara perlahan agar-agar sebanyak 8 gram sambil diaduk  hingga  mendidih.    Media  yang sudah matang tersebut selanjutnya dimasukan  dalam  botol  kultur,  masing- masing  25  ml/botol,  selanjutnya  botol ditutup  dengan  plastik  bening  dan  diikat ketat  menggunakan  karet  gelang.    Botol- botol  kultur  yang  sudah  terisi  media tersebut selanjutnya di sterilkan menggunakan  auto  clave  pada  tekanan  1.5 Psi  selama  20  menit.  Media  yang  telah distrilisasi  tersebut  selanjutnya  dimasukan ke  dalam  ruang  kultur  dan  siap  digunakan untuk kegiatan penelitian.
1) Proses pemilihan Plantlet Proses  pemilihan  plantlet,  dipilih melalui  induk  yang  tidak  terkontaminasi jamur  dan  sehat,  selanjutnya  plantlet  di pilih  pucuk  yang  sehat  dari  plantlet  yang sudah siap untuk diambil pucuknya.
2) Penanaman Kultur jaringan Proses  penanaman  ada  tahapan  yang harus dilakukan, pertama kondisi lab  yang harus  steril  dan  bersih  agar  mengurangi resiko terkontaminasi, kedua harus menyiapkan peralatan, media dan keperluan  yang  dibutuhkan  untuk  di bersihkan,  ketiga  untuk Laminar  Air  Flow Cabinet (LAFC) harus disterilkkan dengan cara menyemprotkan alkohol 70% kemudian  dilap  dengan  tisu  hingga  bersih.
Kemudian    botol  –  botol  kultur,  botol indukan,  gunting,  pinset,  alkohol,  70%, karet  gelang,  disemprot  alkohol  70%  dan dimasukan  kedalam  Laminar Air  Flaw Cabinet. Dan  alat  steril  yang  sudah dibungkus  kertas  tetap  dalam  keadaan terbungkus  kertas  dan  dibuka  didalam laminar.  Selanjutnya  diberi  penyinaran sinar  UV  selama  ±  60  menit  sebelum penanaman, setelah di beri sinar UV maka semuanya sudah steril dan siap penanaman.  Pada  saat  akan  melakukan penanaman,  alat  yang  akan  digunakan harus  disterilkan  kembali  dengan  agar dapat dipastikan steril dengan mencelupkan  alat  kedalam  alkohol  95% kemudian  dibakar  dengan  api  bunsen. Penanaman dilakukan dengan cara mengambil pucuk tanaman dengan menggunakan  gunting  dengan  hati  –  hati agar kondisi dari tanaman tidak rusak, dan setelah memilih semua pucuk yang akan di tanam  didalam  media  MS  yang  disubtitusi dengan  air  kelapa,  kemudia  menanam pucuk  dimedia  yang  sudah  disediakan  dan mengisi  1  botol  media  dengan  2    eksplan pucuk, kemudian botol ditutup menggunakan  plastik  dan  direkat  dengan karet  gelang.  Botol-botol  yang  sudah ditanami  eksplant  selanjutnya  di  letakan pada  rak  kultur  dengan  pengaturan pencahayaan  ruangan  18  jam/hari  pada temperatur  22℃  dan  dilanjut  dengan pengamatan  terhadap  parameter-parameter yang telah ditentukan.
Parameter pengamatan.
1. Tinggi  Tunas,  diamati  setiap  4  hari, diukur  dari  permukaan  media  sampai pada ujung daun tertinggi.
2. Jumlah  Daun,  dilakukan  setiap  4  hari dan  dihitung  semua  daun  yang  sudah terbuka
3. Jumlah  cabang  dihitung  setiap  4  hari dan dihitung setiap cabang yang keluar
4. Jumlah  akar,  di  hitung  setiap  4  hari banyaknya  akar  yang  dihasil  setiap eksplan.
5. Berat kering tanaman/sampel, dilakukan pada akhir penelitian dengan mengeringkan  sampel  (akar,  batang, daun)  dalam  oven  pada  suhu  70º  C selama  2  hari  dan  di  timbang menggunakan timbangan digital.

## Analisis data
Data yang diperoleh dianalisis menggunakan sidik ragam (analisis varians) dan bila signifikan akan dilanjutkan dengan uji BNT 5 %.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Tinggi Tanam
Tinggi  tanaman  merupakan  sebuah indikator atau parameter acuan pengamatan pertumbuhan  tanaman,  tinggi  tanaman dalam  setiap  perlakuan  berbeda  nyata  dan dalam perlakuan P0 menunjukan pertumbuhan  yang  signifikan  jika  dilihat rata-rata  dari  perlakuan  yang  lain.  Hasil analisis  ragam  menunjukan  pemberian  air kelapa pada konsentrasi berbeda memberikan  pengaruh  nyata  terhadap tinggi planlet kentang, sehingga dilanjutkan  ke  uji  BNT  pada  taraf  5%. Data disajikan pada Tabel 1. Tabel 1. Potensi lahan sawah Kecamatan Kotabunan Perlakuan (Air Kelapa) Rata-rata (cm) P0 (MS 100%) 4.88 d P1 (MS 90% + 10% Air Kelapa) 2.78 a P2 (MS 80% + 20% Air Kelapa) 4.03 c P3 (MS 70% + 30% Air Kelapa) 3.44 b

## BNT 5% = 0.19
Ket : Angka yang diikuti dengan huruf berbeda, memiliki perbedaan yang nyata berdasarkan uji BNT 5%
Tabel 1 menunjukkan bahwa masing- masing  perlakuan  memberikan  pengaruh yang  nyata  terhadap  tinggi  tanaman  yang terlihat  pada  notasi  yang  berbeda  pada masing-masing  rata-rata  tinggi  tanaman. Perlakuan  dengan  tinggi  tanaman  terbaik yaitu  pada  media  MS  100%  (P0)  dengan rata-rata tinggi tanaman mencapai 4.88 cm sedangkan  untuk  rata-rata  tinggi  tanaman terendah  pada  perlakuan  MS  90%  +  10% Air  Kelapa  (P1)  dengan  rata-rata  tinggi tanaman hanya mencapai 2.78 cm. Sejalan dengan  penelitian  Pratama  dan  Nilahayati, (2018) yang menyatakan bahwa modifikasi penggunaan  media  MS  100%  memiliki unsur  hara  makro  dan  mikro  yang mendukung  pertumbuhan  tinggi  tanaman yang  lebih.  Hal  ini  disebabkan  karena media  Murashige  dan  Skoog  (MS)  cukup memenuhi unsur makro, mikro dan vitamin yang lengkap untuk menunjang pertumbuhan  tanaman.  Menurut  Fauzia (2010)  Kandungan    auksin    dan    stikoinin yang  terdapat    dalam    air    kelapa mempunyai  peranan  penting  dalam  proses pembelahan sel sehingga membantu pembentukan  tunas  dan  pemanjangan batang. Yusnita (2003) menyatakan bahwa penggunaan ZPT sitokinin mampu menumbuhkan  dan  menggandakan  tunas- tunas aksilar atau merangsang terbentuknya tunas-tunas adventif.

## Jumlah daun
Hasil  analisis  ragam  menunjukan pemberian  air  kelapa  pada  kultur  jaringan tanaman  kentang  berpengaruh  tidak  nyata terhadap  jumlah  daun  tanaman  kentang. Data disajikan pada Tabel 2.
Berdasarkan  tabel  diatas  4.2,  setelah diuji  menggunakan  analisis  sidik  ragam semua  perlakuan  tidak  berbeda  nyata dengan  kontrol  tetapi  jika  dilihat  secara langsung, masing-masing perlakuan memberikan  pengaruh.  Perlakuan  dengan jumlah  daun  terbanyak  terletak  pada perlakuan MS 80% + 20% Air Kelapa (P2) yang  mencapai  11.79  helai  sedangkan untuk  jumlah  daun  paling  sedikit  terletak pada  perlakuan  media  MS  100%  (P0) dengan  rata-rata  10.14  helai.  Hal  ini disebabkan  karena  adanya  kandungan unsur  hara  di  dalam  air  kelapa  yang berperan  dalam  membantu  pertumbuhan dan  perkembangan  jaringan,  sehingga  sel mengalami  differensiasi.  Kandungan  yang ada didalam air kelapa seperti sitokinin dan auksin  yang  menjadi  pengaruh  penting dalam  pemelahan  sel  untuk  pembentukan daun.  Pertumbuhan  daun  dipengaruhi  oleh beberapa  faktor  contohnya  nutrisi  yang diserap  tanaman.  Ketika  nutrisi  yang diserap  tanaman  tidak  optimal  maka pertumbuhan    daun  akan  terhambat, sebaliknya  jika  nutrisi  yang  diserap  oleh tanaman  optimal  maka  pertumbuhan  daun akan  baik.  Dari  hasil  subtitusi  air  kelapa pada  media  MS  terlihat  bahwa  kandungan ini  tidak  terlalu  memberikan  perbedaan yang  signifikan  dikarenakan  tanaman memiliki  jumlah  daun  yang  tidak  terlalu berbeda jumlahnya.

## Jumlah Akar
Hasil  analisis  ragam  menunjukan pemberian  air  kelapa  sebagai  bahan subtitusi  pada  media  berpengaruh  tidak nyata  terhadap  jumlah  akar  plantlet kentang , data disajikan pada Tabel 3.
Tabel 2. Rata- Rata jumlah daun plantlet kentang terhadap subtitusi air kelapa pada media MS.
Perlakuan (Air Kelapa) Rata-Rata (helai) P0 (MS 100%) 10.14 P1 (MS 90% + 10% Air kelapa) 11.14 P2 (MS 80% + 20% Air Kelapa) 11.79 P3 (MS 70% + 30% Air Kelapa) 11.14
Tabel 3. Rata- Rata jumlah akar plantlet kentang terhadap subtitusi air kelapa pada media MS.
Perlakuan (Air Kelapa) Rata-Rata (unit) P0 (MS 100%) 6.79 P1 (MS 90% + 10% Air kelapa) 6.36 P2 (MS 80% + 20% Air Kelapa) 7.00 P3 (MS 70% + 30% Air Kelapa) 6.00
Melalui  Tabel  3,  terlihat  bahwa masing –  masing  perlakuan  tidak memberikan pengaruh yang nyata terhadap jumlah  akar  ,terlihat  pada  rata  –  rata jumlah  akar  memiliki  selisih  yang  tidak terlalu jauh. Perlakuan dengan jumlah akar terbanyak terletak pada perlakuan MS 80%
+  20%  Air  Kelapa  (P2)    yang  mencapai 7.00  unit  sedangkan  untuk  jumlah  akar paling  sedikit  terletak  pada  perlakuan media  MS  70%  +  30%  Air  Kelapa  (P3) dengan  rata-rata  6.00  unit,  tetapi  angka yang  ada  tidak  memiliki  selisih  yang  jauh antar semua perlakuan yang ada. (Anggriani,  2010)  menyatakan  Thiamin yang terkandung dalam media MS berfungsi  untuk  mempercepat  pembelahan sel  pada  meristem  akar,  juga  berperan dalam koenzim dalam reaksi yang menghasilkan  energi  dan  karbohidrat. Walau hasil dari sidik ragam tidak berbeda nyata  antar  perlakuan,  dapat  disimpulkan bahwa  penggunaan  air  kelapa  dapat memenuhi kebutuhan nutrisi plantlet tanaman  dengan  hasil  terbanyak  terdapat pada perlakuan MS 80% + 20% Air Kelapa (P2)  dengan  rata-rata  7.00  unit.  Hal  ini sesuai  dengan  penelitian  (Yusticia  D. 2018)  yaitu  konsentrasi  pemberian  ZPT Alami  (Air  Kelapa)  perlakuan  P2  (50  ml) memberikan rata-rata jumlah akar terbanyak  (21,11)  lembar  Selain  itu  unsur kalsium  yang  terdapat  dalam  air  kelapa juga  berperan  dalam  pembentukan  bulu- bulu akar dan pemanjangan akar.

## Jumlah Cabang
Pada tanaman kentang, cabang memiliki  pengaruh  terhadap  umbi  kentang yang  dihasilkan,  dimana  pembentukan umbi kentang berasal dari cabang samping
yang masuk kedalam tanah dimana cabang tersebut  merupakan  tempat  menyimpan karbohidrat  sehingga  membengkak  dan bisa  dimakan  (Susanto  dan  Joko,  2016). Melalui  pernyataan  tersebut,  dapat  dilihat bahwa pentingnya mengamati pertumbuhan jumlah cabang untuk mengetahui  kuantitas  umbi  yang  akan dihasilkan pada saat pemindahan planlet/bibit  ke  lapangan.  Data  disajikan pada Tabel 4.
Melalui  Tabel  4  terlihat  bahwa masing  –  masing  perlakuan  menunjukan berpengaruh  tidak  nyata  terhadap  rata-rata jumlah  cabang,  terlihat  pada  rata  –  rata jumlah  cabang  yang  memiliki  selisih  yang tidak  terlalu  jauh.  Perlakuan  dengan jumlah  cabang  terbanyak  terletak  pada perlakuan MS 90% + 10% Air Kelapa (P1) yang mencapai 0.93 unit, sedangkan untuk jumlah  cabang  paling  sedikit  terletak  pada perlakuan  media  MS  100%  (P0)  yaitu hanya  memiliki  rata-rata  sebanyak  0.43 unit.
Sejalan  dengan  penelitian  Ariyanti
(2020)  bahwa  pemberian  ZPT  alami dengan  konsentrasi  75%  menghasilkan kecenderungan pertambahan jumlah cabang yang mencapai hampir 1 cabang/bulan  pada  tanaman  kina  yang ditumbuhkan di dataran rendah. Kandungan-kandungan  tersebut  yang  akan memacu  pertumbuhan  cabang  yang  ada pada  kultur  jaringan  tanaman  kentang dikarenakan  air  kelapa  mempunyai  unsur hara  penunjang  sehingga  organ-organ eksplant  bisa  dibantu  pertumbuhannya melalui  kandungan  Auksin,  sitokinin  dan Giberelin yang ada pada air kelapa tersebut yang diserap oleh eksplant.

## Berat Kering
Maryani  (2012)  menyatakan  bahwa berat kering tanaman merupakan hasil dari asimilasi  fotosintat  yang  ditranslokasikan dari  akar  ke  seluruh  bagian  tanaman  dan hasil dari pertambahan protoplasma karena
bertambahnya  ukuran  dan  jumlah  sel. Melalui pernyataan tersebut dapat disimpulkan  bahwa  berat  kering  bisa menjadi  indicator  seberapa  banyak  nutrisi yang  diserap  plantlet  dari  media  yang digunakan. Data disajikan dalam Table 5.
Tabel 4. Rata- Rata jumlah cabang plantlet kentang terhadap subtitusi air kelapa pada media MS.
Perlakuan (Air Kelapa) Rata-Rata (unit) P0 (MS 100%) 0.43 P1 (MS 90% + 10% Air kelapa) 0.93 P2 (MS 80% + 20% Air Kelapa) 0.71 P3 (MS 70% + 30% Air Kelapa) 0.71
Tabel 5. Rata- Rata Berat Kering plantlet kentang terhadap subtitusi air kelapa pada media MS.
Perlakuan (Air Kelapa) Rata-Rata (gr) P0 (MS 100%) 0.015 P1 (MS 90% + 10% Air kelapa) 0.013 P2 (MS 80% + 20% Air Kelapa) 0.014 P3 (MS 70% + 30% Air Kelapa) 0.023
Melalui  Tabel 5, dapat  dilihat bahwa rata-rata  dari  masing-  masing  perlakuan berpengaruh  tidak  nyata    terhadap  berat kering  plantlet  yang  dibuktikan  dengan hasil analisis ragam yang tidak menunjukan pengaruh yang nyata. Perlakuan  yang  memiliki  jumlah  berat kering yang tertinggi pada MS 70% + 30% Air  Kelapa  (P3)  yang  mencapai  0.023  gr. Pengaruh  air  kelapa  dalam  pertumbuhan plantlet  kentang  memberikan  nutrisi  yang cukup sehingga plantlet memilki pertumbuhan  yang  sedikit  signifikan  dari pada kontrol.
Sedangkan  untuk  perlakuan  dengan rata  –  rata  berat  kering  terendah  terdapat pada  perlakuan,  MS  90%  +  10%  Air Kelapa  (P1)  yang  mencapai  0.013  gr. dalam  Bey  dkk.  (2006)  menyatakan  air kelapa muda merupakan suatu bahan alami yang  di  dalamnya  terkandung  hormon seperti  sitokinin  5,8  mg/l  yang  dapat merangsang pertumbuhan tunas dan mengaktifkan  kegiatan  jaringan  atau  sel hidup,  hormon  auksin  0,07  mg/l  dan sedikit  giberelin  serta  senyawa  lain  yang
dapat  menstimulasi  perkecambahan  dan pertumbuhan.
Hasil  penelitian  ini,  walaupun  secara statistik penggunaan air kelapa memberikan    pengaruh    tidak  nyata  tetapi jika  dilihat  dari    nilai  rata-rata      berat kering  tertinggi  planlet  diperoleh  pada perlakuan  30  %  air  kelapa  kondisi  ini menunjukan  sampai  dengan  subtitusi media  dasar  MS  dengan  air  kelapa sebanyak 300 ml/liter (30 %)  memberikan pengaruh  yang  tidak  nyata  atau  hampir sama  efeknya  dengan  perlakuan  100% media  MS,  sehingga  hasil  penelitian  ini menunjukan  bahwa  penggunaan  air  kelapa sangat berpotensi digunakan sebagai bahan yang efektif untuk mensubtitusi kebutuhan media  MS  sekaligus  mengurangi  biaya bahan  media  MS  untuk  perbanyakan  dan pertumbuhan planlet kentang.

## KESIMPULAN DAN SARAN

## Kesimpulan
Substitusi  Air  Kelapa  pada  Media  MS memberikan pengaruh yang nyata terhadap parameter tinggi tanaman tetapi berpengaruh  tidak  nyata  parameter  jumlah
daun,  jumlah  akar,  jumlah  cabang  dan berat kering plantlet kentang.
Penggunaan  air  kelapa  sebagai  subtitusi media  MS  terbaik  untuk  pertumbuhan planlet  kentang  yaitu  pada  konsentrasi  30 %.    karena  tidak  berbedanya  dengan kontrol  (100  %  media  MS),  khususnya parameter  jumlah  daun,  jumlah  akar, jumlah  cabang  dan  kerat  kering  planlet kentang.

## Saran
Penggunaan air kelapa sebagai bahan subtitusi      media  dasar  MS  dapat digunakan untuk perbanyakan dan pertumbuhan  planlet,  dan  sekaligus  dapat menekan  penggunaan  media  MS  yang harganya cukup mahal.

## DAFTAR PUSTAKA
Anggriani,  2010.  Tehnik  Perbanyakan Secara  Kultur  Jaringan  Pustaka  Abdi Yogyakarta.
Ariyanti,  M.,  Maxiselly,  Y.,  &  Soleh,  M. A.  (2020).  Pengaruh  Aplikasi  air kelapa  sebagai  zat  pengatur  tumbuh alami  terhadap  pertumbuhan  kina (Cinchona ledgeriana Moens) setelah pembentukan batang di daerah Marjinal. Agrosintesa  Jurnal  Ilmu Budidaya Pertanian , 3 (1), 12-23. Bey, Y., Wan Syafil, Sutrisna,2006.Pengaruh    Pemberian Giberelindan Air Kelapa terhadapPertumbuhan        Anggek Bulan.    J.Biogenesis. 2(2): 41-46 BPS  Indonesia.  2021.  Produksi  tanaman sayuran tahun 2021 (ton).
https:/ /www.bps.go.id/indi c ator/55/6 1/1/produksi-tanaman-sayuran.html. Diakses tanggal 17 Januari 2023.
Fauzia, G. 2010. Efektifitas Air Kelapa dan Ampas  Teh  Terhadap  Pertumbuhan Tanaman  Mahkota  Dewa  (Phaleria macrocarpa)  Pada  Media  Tanam Yang Berbeda.
Kaur  C.S,  N.  Kaur  and  A.  Kaur.2015 . Effect  of  growth  regulators  on micropropagation  of  potato  cultivars Manpreet  Kaur ,  Rabinder.  African Journal  of  Crop  Science.  3  (5):  162- 164.
Mohapatra  P.P.  and  V.K.  Batra.  2017.
Tissue  Culture  of  Potato ( Solanum tuberosum L.):  A  Review.  Int.  J.
Curr. Microbiol. App. Sci. 6(4): 489- 495.
Marpaung, R. G., Pasaribu, D., & Gulo, Y. S.  (2020).  Pengaruh  ekstrak  kentang dan  air  kelapa  muda  terhadap pertumbuhan  planlet  Dendrobium  sp pada  media  vacin  dan  went. Jurnal Agrotekda , 3 (2), 84-92. Maryani.  T.  A,  2012.  Pengaruh  Volume Pemberian Air Terhadap Pertumbuhan  Bibit  Kelapa  Sawit  Di Pembibitan  Utama.  Program  Studi Agroekoteknologi,
Fakultas Pertanian  Universitas  Jambi.  Jurnal.
ISSN: 2302-6472. 64-74 hal. Seswita,  D.  2010.  Penggunaan  air  kelapa sebagai  zat  pengatur  tumbuh  pada multiplikasi tunas Temulawak
(Curcuma  xanthorrhiza  Roxb.)  in vitro. J. Littri. 16 (4): 135- 140.
Susanto,  dan  E.  Joko.  2016.  Pengaruh
Biochar  dan  Pupuk  Kandang  Ayam terhadap  Pertumbuhan  dan  Produksi Tanaman Kentang (Solanum tuberosum L. ) . Medan Area University Repository. Skripsi.
https://repositori.uma.ac.id/handle/12
3456789/533 . Diakses: 19 Juni 2023.
Yusnita.  2003.  Kultur  Jaringan  Cara Memperbanyak Tanaman Secara Efisien. Agromedia Pustaka. Jakarta.
Yustisia,  D.,  Arsyad,  M.,  Wahid,  A.,  &
Asri,  J.  (2018).  Pengaruh  pemberian zpt alami (air kelapa) pada media ms 0  terhadap  pertumbuhan  planlet tanaman kentang (Solanum tuberosum.  L.). Agrominansia , 3 (2),
130-140.