Efek Panjang Gelombang Terhadap Pertumbuhan Propagul Pada Kultur Jaringan Eucheuma cottonii Doty, 1885 (Rhodophyceae; Solieracea)
Wilis Ari Setyati 1 *, Rini Pramesti 1 , Delianis Pringgenies 1 , Chrisna Adhi Suryono 1 , Irwani 1 , Muhammad Zainuddin 2
1 Departemen Ilmu Kelautan, Fakultas Perikanan Dan Ilmu Kelautan, Universitas Diponegoro Jl. Prof Soedarto, SH., Tembalang, Semarang 50275 Indonesia 2 Program Studi Akuakultur, Fakultas Sain Dan Teknologi, Universitas Islam Nahdlatul Ulama Jepara Jl. Taman Siswa, Pekeng, Tahunan, Jepara, Jawa Tengah 59451 Indonesia
Email: wilisarisetyati@yahoo.co.id

## Abstract

## The Effect of Wavelength on Growth of Propagule Eucheuma cottonii Doty Tissue Culture, 1885
(Rhodophyceae; Solieracea)
The  problem  in  cultivating  Eucheuma  cottonii  is  the  procurement  of  seeds  and  techniques currently developed through tissue culture. The limiting factor in this technique is the use of optimal light for the growth of the seaweed. The aims of study was to optimize the wavelength of light on the growth of E cottonii propagules. The research method is laboratory experimental with the treatment of different wavelengths of light: red light wavelength (λ = 633.8 nm), green (λ = 515.8 nm), blue (λ = 455.7 nm), combined light on the lamp LED (λ = 456.6 nm, 515.8 nm and 632.9 nm), and fluorescent light in TL lamps (λ = 407 nm, 443 nm, 557 nm and 592 nm). The results showed that the wavelength had a significant effect (p ≤0.05) on the growth of E cottonii. The best treatment for blue light with absolute, relative and specific growth values of propagule weight of 155 ± 11.910 mg, 419 ± 70.849%, and 5.860 ± 0.501% / day. The absolute, relative and specific growth values for propagule diameter were 701 ± 123.1 mm, 63 ± 12% and 1.73 ± 0.27% / day. The percentage of branching growth and the branching index were 60.85 ± 9.16% and 27.77 ± 1.23. Blue light treatment is optimal radiation in the E. cottonii tissue culture
Keywords : light; growth; propagul

## Abstrak
Permasalahan dalam budidaya Eucheuma cottonii adalah pengadaan bibit dan teknik yang berkembang saat ini melalui kultur jaringan. Faktor pembatas dalam teknik ini adalah penggunaan cahaya  yang  optimal  untuk  pertumbuhan  rumput  laut.  Penelitian  bertujuan  untuk  melakukan optimasi  panjang  gelombang  cahaya  terhadap  pertumbuhan  propagul E  cottonii .  Metode penelitian  secara  experimental  laboratoris  dengan  perlakuan  perbedaan  panjang  gelombang cahaya : panjang gelombang lampu cahaya merah (λ = 633,8 nm), hijau (λ = 515,8 nm), biru (λ = 455,7 nm ), cahaya gabungan pada lampu LED (λ = 456,6 nm, 515,8 nm dan 632,9 nm), dan cahaya flourescent pada lampu TL (λ = 407 nm, 443 nm, 557 nm dan 592 nm). Hasil penelitian menunjukkan bahwa panjang gelombang berpengaruh signifikan (p < 0,05) terhadap pertumbuhan E cottonii . Perlakuan terbaik pada cahaya biru dengan nilai pertumbuhan mutlak, relatif dan spesifik  bobot propagul sebesar 155±11,910 mg, 419 ± 70,849 %, dan 5,860 ± 0,501 %/hari. Nilai pertumbuhan mutlak, relatif  dan  spesifik  diameter  propagul  sebesar  701±123,1  mm,  63±12  %  dan  1,73±0,27  %/hari. Persentase  pertumbuhan  percabangan  dan  indeks  percabangan  sebesar  60,85±9,16  %  dan 27,77±1,23. Perlakuan sinar biru merupakan penyinaran optimal dalam kultur jaringan E. cottonii .
Kata kunci : cahaya; pertumbuhan; propagul

## PENDAHULUAN
Indonesia merupakan daerah penghasil rumput  laut  terbesar  di  daerah  tropis  dan nomor  dua  setelah  China  (FAO,  2014  dan FAO,  2018).    Budidaya  rumput  laut  secara komersial dimulai tahan 1987 di Bali dan pada tahun  2007  Indonesia  telah  menggantikan Filipina  sebagai  penghasil  karagenan  (FAO, 2014;  Bixler  &  Porse,  2011).    Meningkatnya produksi  karagenan  disebabkan  meningkatnya jumlah petani dan luas lahan budidaya bukan karena  produktifitasnya  yang  tinggi  (Bixler  & Porse, 2011; Neish 2013).  Eucheuma hidup di seluruh kawasan Indo-Pasifik dari Afrika Timur, Guam,  perairan  Cina  dan  Jepang  dan sebagian besar di daerah terumbu karang di pulau-  pulau  di  Asia  Tenggara  (Doty,  1987). Rumput  laut  sekarang  banyak  diteliti  karena tingginya  kandungan  polisakarida,  rata  rata kandungan  karbohidrat  antar  30 – 80%  dari berat  kering  (Bouanati et  al .,  2020).    Rumput laut  merupakan  reservoir  biomolekul  yang tidak  ada  habisnya  dengan  berbagai  fungsi dan  komponen  agar  yang  berbeda  seperti protein, vitamin, mineral, karbohidrat, pigmen dan  lemak  yang  saat  ini  menjadi  alternatif industri  makanan,  kosmestik  maupun  farmasi (Yakob  et  al.,  2014;  Xu  et  al,  2017). Peningkatan kebutuhan alga coklat di dunia karena  digunakan  untuk  keperluan  produksi makanan, farmasi maupun sintesa produk lain seperti  anti  mikroba  dan  pathogen  dan bahan  bakar  (biofieul  (Zemke-White  & Ohno.,1999;  FAO,  2012;  Vatsos  &  Rebours, 2015;  Thanigaivel et  al .,  2016).    Peningkatan kebutuhan  rumput  laut  jenis  alga  coklat seperti  Eucheuma  maupun  Gracilaria  hanya dapat dipenuhi melalui usaha budidaya baik di  laut  maupun  di  tambak  (Suryono  et  al., 2020).    Peningkatan  kebutuhan  rumput  laut budidaya  telah  berkembang  beberapa decade  terakir.    Jumlah  rumput  laut  yang dibudidayakan  meningkat  dari  6,5  juta  ton pada tahun 2001 menjadi 15,5 juta ton pada tahun  2010.    NiIai  rumput  laut  pada  tahun tersebut  meningkat  dari  US  $  1.768  juta menjadi US $ 4.143 kontribusi dari rumput laut merah  (57%)  dan  coklat  (43%)  (FAO,2013; Ghadiryanfar, 2016).
Peningkatan  budidaya  rumput  laut yang  semakin  meningkat  untuk  kebutuhan industri  tentunya  harus  diikuti  ketersediaan
bibit  baik  secara  vegetative  maupun generative.    Permasalahan  dalam  budidaya salah satunya adalah ketersediaan bibit yang mempunyai  kualitas  bagus  (Suryati  & Mulyaningrum,  2009).    Salah  satu  teknik menyediakan bibit secara vegetative adalah dengan  kultur  jaringan.    Kultur  jaringan memiliki  keunggulan  diantaranya  dapat diproduksi  dalam  jumlah  banyak  dan  tidak tergantung  musim  (Yokoya  &  Yoneshigue- Valentin,  2011).    Bibit  selalu  tersedia,  identik dengan  induknya,  kesehatan  bibit  lebih terjamin,  dan  dapat  tumbuh  dengan  cepat saat  dibudidaya  (Yildiz,  2012).    Bibit  unggul telah  banyak  didapatkan  dari  cara  kultur jaringan (Mulyaningrum et al. , 2012; Sulistiani et al ., 2012).  Keberhasilan budidaya rumput laut tidak hanya oleh bibit namun juga oleh kondisi lingkungan  seperti  salinitas,  cahaya,  suhu maupun  nutrient.  Faktor  cahaya  sangat berpengaruh dalam penyediaan bibit secara kultur  jaringan  terutama  untuk  pertumbuhan dan  produksi  bibit.    Namun  cahaya  sendiri memiliki  banyak  panjang  gelombang  dan tidak  semuanya  dapat  digunakan  oleh tumbuhan  (Hurd et  al., 2014).    Beberapa penelitian  gelombang  cahaya  terhadap rumput  laut  telah  dilakukan.    Panjang gelombang  cahaya  berpengaruh  pada efisiensi fotosintesis Houttuynia cordata (Wang et  al., 2015) . Cahaya  juga  berpengaruh terhadap nilai pertumbuhan Undaria pinnatifida (Takahide et  al., 2017).    Cahaya dengan  berbagai  warna  dengan  panjang gelombang  tertentu  berpengaruh  terhadap nilai  pertumbuhan  dan  fitokimia Pyropia haitanensis (Wu, 2016).  Aplikasi cahaya sudah dilakukan pada beberapa rumput laut namun belum  pernah  dilakukan  pada E.  cottonii, sehingga penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui  panjang  gelombang  cahaya optimal dalam kultur jaringan E. cottonii

## MATERI DAN  METODE
Penelitian  ini  menggunakan  propagul rumput laut E. cottonii hasil kultur jaringan dari Laboratorium SEAMEO Bogor.  Induk diperoleh dari petani rumput laut di Kabupaten Natuna, Propinsi  Kepulauan  Riau.  Kultur  dalam penelitian  ini  menggunakan  air  laut  steril  30 ppt  dan  media  air  laut  yang  diperkaya (Pramesti,  2013).  Propagul E.  cottonii yang digunakan  adalah  hasil  aklimatisasi  yang
sehat, tidak terdapat bercak, tidak terkelupas, talus elastis dan seragam.  Propagul dipelihara dalam  botol  duran  dengan  kepadatan  10 propagul,  media  500  ml,  media  air  laut diperkaya 20 ml/l, salinitas 30-32 ppt, suhu 24- 25 o C,  pH  7,5-8,  biomassa  awal  0,2±0,05  g. Pemeliharaan  diberikan  aerasi,  penyinaran cahaya gelap : terang = 12 : 12 jam dengan intensitas 2500 lux.
Perlakuan  penelitian  berupa  panjang gelombang  dan  masing  perlakuan  dengan empat  ulangan.    Jenis  perlakuannya  adalah lampu  cahaya  merah (λ  = 633,8  nm),  lampu cahaya  hijau (λ  = 515,8  nm),  lampu  cahaya biru (λ = 455,7 nm), cahaya gabungan pada lampu LED (λ = 456,6 nm, 515,8 nm dan 632,9 nm), dan cahaya flourescent pada lampu TL (λ  = 407  nm,  443  nm,  557  nm  dan  592  nm). Parameter yang diamati seperti: (1) Pertumbuhan  mutlak  dan  relatif  propagul rumput laut E. cottonii (Hendri et al., 2017).  (2) Pertumbuhan  spesifik  (SGR)  propagul  rumput laut E.  cottonii .    (3)  Pengamatan  dan pengukuran  diameter  propagul  (Fadilah  & Dhini,  2016).    Data  yang  diperoleh  dilakukan analisa  ragam  dengan  menggunakan  SPSS 16.0.  Analisis regresi digunakan untuk melihat hubungan antara panjang gelombang  455,7 nm  (biru),  515,8  nm  (hijau)  dan  633,8  nm (merah)  terhadap  respon  propagul  dan melihat hubungan antara persentase komposisi warna biru pada perlakuan yaitu 32 %  (fluorescent),  61  %  (gabungan  /  LED)  dan 100 % (lampu biru) terhadap respon propagul.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Berat  propagul  merupakan  parameter biometri yang
digunakan untuk
mendiskripsikan  pertumbuhan  rumput  laut. Data tersebut selanjutnya dihitung pertumbuhan mutlak, relatif dan spesifik. Hasil perhitungan  rata-rata  pertumbuhan  mutlak, pertumbuhan  relatif  dan  laju  pertumbuhan spesifik propagul E. cottonii (Gambar 1).  Hasil penelitian menunjukkan perlakuan perbedaan  panjang  gelombang  cahaya berpengaruh  secara  signifikan  (p ≤ 0,05) terhadap  pertumbuhan  mutlak.  Selang  data pertumbuhan mutlak antara 34,6  - 145,4 mg. Hasil  uji  Duncan  menunjukkan  perbedaan respon  pertumbuhan  yang  nyata  (p ≤ 0,05) pada  setiap  perlakuan.  Jika  data  rata-rata
pertumbuhan  mutlak  bobot  di  urutkan  dari tertinggi  ke  terendah  adalah  cahaya  biru sebesar  145,4±14,0  mg,  cahaya  dengan lampu  LED  (114,1±7,2  mg),  cahaya  dengan lampu  flourescent  (84,9±3,4  mg),  cahaya merah  (71,8±2,3  mg),  cahaya    warna  hijau (34,6±3,7 mg).
Pertumbuhan  bobot  mutlak  propagul merupakan  pertambahan  bobot  karena bertambahnya  sel  yang  selanjutnya  menjadi jaringan.  Jaringan  akan  membentuk  organ dan  ini  dapat  menambah  bobot  biomassa. Fotosintesis menghasilkan oksigen dan karbohidrat sebagai bahan penyusun sel dan cadangan makanan. Semakin tinggi fotosintesis  yang  maka  pertumbuhan  akan meningkat.  Hal  ini  sesuai  (Hurd et  al .,  2014) kloroplast  mengandung  beberapa  pigmen diantaranya    klorofil  a  yang  berfungsi menyerap  cahaya  biru-violet  dan  merah. Cahaya  digunakan  tumbuhan  dalam  proses fotosintesis,  dengan  intensitas  cahaya  yang cukup  maka  perubahan  senyawa  anorganik menjadi  senyawa  organik  juga  akan berlangsung  optimal  dan  pertumbuhannya menjadi  lebih  cepat  (Pramesti,  2013). Ditambahkan Wu (2016) panjang gelombang cahaya  mempengaruhi  nilai  pertumbuhan dan fitokimia alga.
Perlakuan perbedaan panjang
gelombang cahaya dalam kultur berpengaruh  secara  signifikan  (p≤0,05) terhadap  pertumbuhan  relatif  dan  laju pertumbuhan  spesifik  (SGR)  propagul.    Data pertumbuhan relatif yang didapatkan memiliki selang  110 – 419  %  dan  SGR  dengan  selang 2,649 – 5,860  %/hari.  Uji  Duncan  menunjukkan respon  pertumbuhan  relatif  dan  SGR  adalah berbeda  nyata  (p≤0,05)  pada  setiap perlakuan.  Respon  pertumbuhan  relatif tertinggi  dan  SGR  tertinggi  adalah  pada perlakuan  pemberian  pencahayaan  warna biru  yaitu  sebesar  419±70,849  %  dan 5,860±0,501  %/hari.  Respon  pertumbuhan relatif  tertinggi  dan  SGR  tertinggi  pada perlakuan  cahaya  hijau  yaitu  110±10,670  % dan  2,649±0,183  %/hari.  Berdasarkan  data pertumbuhan mutlak, relatif dan SGR tersebut diduga terdapat hubungan antara perlakuan penyinaran  terhadap  respon  pertumbuhan. Hasil  analisis  regresi  antara  perlakuan terhadap respon (Gambar 2).

## Pertumbuhan mutlak bobot (mg)
Pertumbuhan relatif (%)
SGR (%/hari)
Gambar 1. Pengaruh panjang gelombang terhadap pertumbuhan propagul
Panjang gelombang (nm)
Persentase komposisi gelombang biru (%)
Gambar 2. Hubungan panjang gelombang terhadap pertumbuhan propagul
Berdasarkan  analisis  regresi  antara panjang gelombang 455,7 nm (biru), 515,8 nm (hijau) dan 633,8 nm (merah) terhadap respon pertumbuhan  mutlak  propagul  menunjukkan adanya hubungan regresi non linier berbentuk parabola negatif yaitu semakin tinggi panjang gelombang  maka  pertumbuhan  mutlak
semakin  turun  dan  selanjutnya  pertumbuhan mutlak kembali mengalami kenaikan. Pertumbuhan mutlak tertinggi terdapat pada cahaya biru.
Hasil  uji  regresi  linier  pada  persentase komposisi  warna  biru  pada  perlakuan
terhadap  respon  pertumbuhan  mutlak propagul  menunjukkan  terdapat  hubungan regresi  linier  sederhana  yaitu  semakin  tinggi komposisi  warna  biru  maka  pertumbuhan mutlak  semakin  tinggi.  Berdasarkan  hasil penelitian  rata-rata  pertumbuhan  mutlak bobot  tertinggi  pada  panjang  gelombang cahaya  455,7  nm  dengan  warna  biru. Penelitian  Godinez-Ortega  (2008)  yang menguji  pertumbuhan  rumput  laut  merah dengan  pemberian  panjang  gelombang berbeda  dan    pertumbuhan  tertinggi  pada cahaya  biru.  Cahaya  berwarna  biru merupakan cahaya yang diserap chlorophyll- a. Ditambahkan (Hurt et al ., 2014) konsentrasi klorofil  yang  tinggi  pada  rumput  laut  akan menyerap  energi  cahaya  dengan  jumlah yang  banyak.  Ditambahkan  Packer  (2009) efisiensi  fotosintesis  didefinisikan  sebagai persentase  radiasi  cahaya  yang  diubah menjadi  biomassa.  Okumura et  al. (2015) bahwa cahaya monokromatik berwarna biru menghasilkan laju pertumbuhan dan biomasa tertinggi pada Botryococcus braunii . Menurut Wu (2016) cahaya pada panjang gelombang warna  biru  memiliki  efisiensi  fotosintesis tertinggi pada rumput laut merah. (Matthijs et al., 1996)  menyatakan  enzim  yang  terlibat
dalam  metabolisme  karbohidrat  diatur  oleh cahaya warna biru.
Data  morfologi  propagul  yang  terdiri dari  data  diameter  talus  dan  percabangan propagul. Adapun hasil perhitungan pertumbuhan  mutlak,  relatif  dan  spesifik diameter talus propagul E.cottonii tersaji pada Gambar 3.
Hasil penelitian menunjukkan perbedaan panjang
gelombang berpengaruh  secara  signifikan  (p ≤0,05) terhadap  pertumbuhan  diameter  talus  baik mutlak,  relatif  dan  SGR.  Uji  Duncan menunjukkan perbedaan respon pertumbuhan  diameter  talus  yang  nyata (p≤0,05) pada setiap perlakuan.
Cahaya  warna  biru  memiliki  respon pertumbuhan  mutlak,  relatif  dan  SGR diameter talus tertinggi yaitu secara berurutan sebesar 701±123,1 mm, 63±12 % dan 1,73±0,27 %/hari.  Berdasarkan  data  pertumbuhan mutlak,  relatif  dan  SGR  diameter  talus menunjukkan  terdapat  hubungan  antara perlakuan  penyinaran  terhadap  respon diameter talus (Gambar 4).
Pertumbuhan mutlak diameter
Pertumbuhan relatif diameter.
Laju pertumbuhan diameter
Gambar 3. Pengaruh panjang gelombang terhadap diameter propagul
Pertambahan diameter talus yang besar diduga  fotosintesis  yang  optimal  dan  laju pertumbuhan  yang  tinggi  juga.  Hurt et  al. (2014)  panjang  gelombang  yang  sesuai dapat  menjaga  proses  fotosintesis  terus berlangsung  termasuk  pembelahan  sel  yang menambah ukuran tanaman.   Mulyaningrum et  al. (2012)  diameter  batang  bertambah karena tumbuhnya jaringan meristem diantaranya meristem lateral yang terletak di organ yang mengalami pelebaran. Meristem lateral  menghasilkan  sel-sel  baru  yang memperpanjang diameter talus dan memperluas permukaan talus.
Besarnya  luas  permukaan  diduga propagul pada perlakuan
panjang gelombang biru lebih efisien dalam menyerap cahaya  yang  dibutuhkan  dalam  proses fotosintesis. Ditambahkan Stewart & Carpenter  (2003)  laju  fotosintesis  bersih  dari biomassa  spesifik  rumput  laut  meningkat dengan  semakin  meningkatnya  rasio  luas
permukaan:  volume  talus.  Tingginya  serapan cahaya  oleh  propagul  pada  perlakuan panjang  gelombang  biru  akan  diikuti tingginya laju fotosintesis, yang meningkatkan laju penyerapan karbon serta laju pertumbuhannya.  Laju  pertumbuhan  yang meningkat mempengaruhi pembesaran diameter dan cabang propagul.
Hasil  penelitian  tentang  morfologi percabangan  yang  terdiri  persentase  dan indek  pembentukan  percabangan.  Adapun hasil analisis
data
pembentukan percabangan, persentase dan indek percabangan propagul (Gambar 5).
Perlakuan  cahaya  dengan  fluorescent (lampu  TL)  memiliki  respon  persentase pembentukan percabangan propagul tertinggi sebesar 61,70 ± 13,26 % dan terendah pada cahaya gabungan (lampu LED) sebesar 30,36 ± 7,01 %. Jika data indeks percabangan propagul di urutkan dari tertinggi ke terendah
Panjang gelombang (nm) Persentase komposisi gelombang biru (%)
Gambar 4. Hubungan panjang gelombang  terhadap pertumbuhan mutlak diameter
Persen percabangan
Indeks percabangan
adalah  yang  tertinggi  perlakuan  cahaya hijau,  fluorescent  (lampu  TL),  cahaya  merah, cahaya  biru  dan  cahaya  gabungan  (lampu LED).  Perlakuan  cahaya  hijau  memiliki  indek percabangan  tertinggi  yaitu  60,45±3,67, sedangkan  cahaya  gabungan  (lampu  LED) terendah yaitu 27,64±4,20.
Berdasarkan  hasil  penelitian  diperoleh hasil  tertinggi  pada  perlakuan  panjang gelombang cahaya warna biru. Hal ini diduga gelombang  cahaya  biru  berperan  dalam pertumbuhan  maupun  proses  metabolisme sel.  Gelombang cahaya dalam penelitian  ini menghasilkan  respon  berbeda  terhadap perubahan  morfologi.  Hurd et  al .  (2014) panjang  gelombang  cahaya  yang  sesuai dapat  menjaga  proses  fotosintesis  terus berlangsung  termasuk  pembelahan  sel  yang menambah ukuran tanaman dan pembentukan tunas, sehingga dapat mengoptimalkan pembentukan tunas. Pertumbuhan  yang  optimal  ini  dapat mensintesis berbagai
hasil
seperti pembentukan hormon yang memacu pertumbuhan  maupun  pembentukan  organ tanaman.
Pertumbuhan cabang merupakan hasil dari  pembelahan  dan  pembesaran  sel  yang terjadi di jaringan meristem. Jaringan meristem adalah jaringan yang bersifat embrionik, yaitu sel-selnya mempunyai kemampuan membelah diri secara terus-menerus. Mulyaningrum et al. (2012)  jaringan meristem terdapat  di  ujung  dan    interkalar.  Meristem ujung  terletak  di  ujung  akar  atau  batang. Meristem  interkalar  terletak  diantara  jaringan yang terdiferensiasi. Meristem yang di bagian ujung menghasilkan sel-sel baru di ujung talus rumput  laut  sehingga  talus  bertambah panjang. Meristem interkalar memberi pemanjangan sel-sel di ruas-ruas cabang.

## KESIMPULAN
Perlakuan panjang gelombang cahaya berpengaruh  signifikan  (p ≤ 0,05)  terhadap pertumbuhan dan morfologi propagul Eucheuma  cottonii . Pertumbuhan  bobot, diameter talus dan persentase percabangan terbaik pada perlakuan cahaya biru dengan panjang gelombang 455,7 nm.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Kami mengucapkan terimakasih kepada  pemberi  dana  yang  bersumber  dari selain APBN DPA LPPM, Universitas Diponegoro Tahun Anggaran 2019.

## DAFTAR PUSTAKA
Bixler,  H.J.  &  Porse,  H.  2011.  A  decade  of change  in  the  seaweed  hydrocolloids industry. J. Appl. Phycol . 23:321 – 335 Bouanati,  T.,  Colson,  E.,  Sébastien  Moins,S., Cabrera, J.C, Eeckhaut, I., Raquez, J.M. & Pascal  Gerbaux,  P.  2020.  Microwave- assisted depolymerization of carrageenans from Kappaphycus
alvarezii  and  Eucheuma  spinosum: Controlled  and  green  production  of oligosaccharides from the algae biomass. Algal Research, 51:1-10. doi:
10.1016/j.algal.2020.102054
Doty, M.S. 1987. The production and use of Eucheuma. In: Doty, M.A., Caddy, J.F., Santelices, B. (Eds.), Case Studies of Seven Commercial Seaweed Resources. FAO Fish. Tech. Pap., 281 Rome Fadilah.  S.  &  Dhini,  A.P.,  2016.  Propagasi  Bibit Rumput Laut Gracilaria gigas pada Tahap
Kultur Jaringan, Aklimatisasi, dan Pembesaran. Media Akuakultur .
11(2):1010-1014.
FAO,  2014.  Fao  Year  book,  Fishery  and Aquaculture  Statistics  2012,  Food  & Agriculture Org
FAO. 2012. The state of world fisheries and aquaculture. Opportunities and challenges
FAO.  2013.  Yearbookof  fishery  statistics summary
tables.
〈 ftp://ftp.fao.org/fi/stat/summary/ default.htm 〉 ; accessed7.09.13. FAO.
2018. Meeting the Sustainable Development Goals, Rome.
Ghadiryanfar,  M.,  Rosentrater,  K.A.,  Keyhani, A.  &  Omid,  M.  2016.  A  review  of macroalgae  production,  with  potential applications  in  biofuels  and  bioenergy. Renew. Sust. Energ. Rev., 54:473 – 481. doi:
10.1016/j.rser.2015.10.020
Godinez-Ortega, J.L.,  Snoeijs, P., Robledo, D., Freile-Pelegrin  ,Y.  &  Pedersen,  M.  2008. Growth and Pigment Composition in The Red  Alga Halymenia  floresii Cultured
Under  Different  Light  Qualities. J.  App. Phycolog. 20:253-260.
Hendri,  M.,  Rozirwan.  &  Apri,  R.,  2017., Optimization of Cultivated Seaweed Land Gracilaria sp . Using Vertikultur System. Int. J. Mar. Sci., 7(43):411-422.
Hurd, C.L., Harrison, P. J., Bischof, K., & Lobban,
C.S.  2014.  Seaweed  Ecology  and Physiology.  2 nd .  Cambridge  University Press. doi: 10.1017/CB09781139(92637) Matthijs, H.C.P., Balke, H., Van Hes, U.M., Kroon,
B.M.A.,  Mur,  L.R.  &  Binot,  R.A.,  1996. Application  of  Light-Emitting  Diodes  in Bioreactors:  Flashing  Light  Effects  and Energy  Economy  in  Algal  Culture ( Chlorella pyrenoidosa ). Biotechnol. Bioeng., 50(1):98-107.
Neish,  I.C.,  2013.,  Social  and  economic dimensions  of  carrageenan  seaweed farming  in  Indonesia, Soc.  Econ.  Dimens. Carrageenan  Seaweed  Farming  Fish . Aquac. Tech . Pap . 580:61 – 89.
Okumura,  C., Saffreena,  A.N., Rahman, M.A.,
Hasegawa,  H.,  Miki,  O.  &  Takimoto,  A. 2015.  Economic  Efficiency  of  Different Light  Wavelengths  and  Intensities  Using LEDs  for  The  Cultivation  of  Green Microalga Botryococcus  braunii (NIES- 836) for Biofuel Production. Environ. Prog. Sustain. Energ ., 34(1):269-275.
Packer,  M.,  2009.  Algal  Capture  of  Carbon
Dioxide: Biomass Generation as A Tool for Greenhouse Gas Mitigation with
Reference  to  New  Zealand  Energy Strategy  and  Policy. Energy  Policy .  37: 3428-3437.
Pramesti,  R.  2013.  Media  Air  Laut  yang Diperkaya  Terhadap  Laju  Pertumbuhan Gracilaria  lichenoides L  (Harvey). Bul. Oseanograf.  Mar. 2(1):66  -71  doi:
10.14710/buloma.v21.6929
Stewart,  H.L.  &  Carpenter,  R.C.  2003.  The Effects of Morphology and Water Flow on Photosynthesis  of  Marine  Macroalgae. Ecology . 84(11):2999- 3012
Suryono, C.A., Irwani, Sabdono, A., Pribadi, R., Setyani,  W.A.,  &  Indarjo,  A.,  2020.,
Pertumbuhan Rumput Laut Gracilaria sp. Greville, 1830 (Rhodophyta: Florideophyceae)  di  Tambak  Tidak Produktif Mangunharjo Tugu Semarang. J. Mar. Res., 9(4):369-373 doi: 10.14710/jmr.v9i4.29215
Takahide, Y., Hisayuki, A., Saori., Ryo, I., Akira, M.  &  Yutaka,  O.  2017.  Effects  of  Light Conditions on The Growth of Commercial Seaweed Undaria  piunnatifida. Afr.  J. Plant Sci . 11(6):190-196. Thanigaivel, S., Chandrasekaran, N., Mukherjee,  A.  &  Thomas,  J.  2016. Seaweeds  as  an  alternative  therapeutic source for aquatic disease management.
Aquaculture, 464:529 – 536 Vatsos,  I.N.  &  Rebours,  C.,  2015.  Seaweed extracts  as  antimicrobial  agents  in aquaculture. J.  App.  Phycol. ,  27(5):2017- 2035
Wang,  Z.,  Tian,  J.,  Yu,  B.,  Yang,  L.,  &  Sun,  Y.,
2015.,  LED  Light  Spectrum  Affects  The
Photosynthetic Performance of
Houttuynia  cordata Seedlings. Am.  J. Optics Photonics. 3(3):38-42
Wu, H., 2016. Effect of Different Light Qualities on  Growth,  Pigmen  Content,  Chlorophyll Fluorescence,  and  Antioxidant  Enzyme Activity  in  The  Red  Alga Pyropia haitanensis (Bangiales,  Rhodophyta).
BioMed Res. Int., 1-8
Xu,  S.Y.,  Huang,  X.  &  Cheong,  K.L.,  2017. Recent  advances  in  marine  algae polysaccharides:  isolation, structure, and activities, Mar. Drugs. 15(12):1 – 16 Yakob,  Z.,  Ali,  E.,  Zainal,  A.,  Mohamad,  M.,  &
Takriff, M.S. 2014. An overview: biomolecules from microalgae for animal feed and aquaculture, J. Biol. Res . 21(1):1 – 10.
Zemke-White,  W.L.  &  Ohno,  M.1999.  World seaweed  utilization:  an  end-of  century summary. J. App. Phycolog., 11:369 – 376