DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
UJI EFEKTIVITAS BEBERAPA ISOLAT Trichoderma sp. TERHADAP PENYAKIT JAMUR AKAR PUTIH ( Rigidoporus microporus )
(Test The Effectiveness Of Several Isolates Of Trichoderma sp. Against White Root Fungus (Rigidoporus microporus))
Mutiara Titik Falahiyah 1 , Syamsul Bahri 1 , Yenni Marnita 1* , Cici Indriani Dalimunthe 2
1 Program Studi Agroteknologi Fakultas Pertanian, Universitas Samudra Jalan Prof. Dr. Syarief Thayeb, Meurandeh Langsa Lama, Kota Langsa, Aceh. Indonesia
2 Peneliti Proteksi Tanaman, Unit Riset Sungei Putih Jalan Sei Putih Rispa, Kp. Klp. Satu, Kec. Galang, Kabupaten Deli Serdang, Sumatera Utara,
*Corresponding author, Email : yennimarnita78@gmail.com

## ABSTRACT
This  study  aims  to  determine  the  effectiveness  of  several  isolates  of  Trichoderma  sp.  in controlling White Root Fungus disease in rubber plants, knowing the percentage of inhibition of various isolates of Trichoderma sp. against White Root Fungus disease on rubber plants, as well  as  knowing  the  growth  area  of  Trichoderma  sp.  against  White  Root  Fungus  disease using  Potato  Dextrose  Agar  media  with  Dual  Culture  method.  Plant  disease  is  a  limiting factor on plant growth and development, White Root Fungus disease caused by the pathogen Rigidoporus  lignosus  has  been  reported  to  cause  losses  to  rubber  plants  Biological  control with  Trichoderma  sp.  is  disease  control  by  involving  the  manipulation  of  beneficial  natural enemies to  obtain a reduction in  population  numbers and the status  of pests and diseases  in the  field.  This  study  used  the  experimental  method  at  the  Sungei  Putih  Research  Unit Laboratory  using  a  non-factorial  Completely  Randomized  Design  (CRD)  consisting  of  4 replications. As a treatment, isolate of the endophytic fungus Trichoderma sp. and the isolate tested for antagonism was White Root Fungus. The T2 treatment obtained good effectiveness in  suppressing  the  growth  of  White  Root  Fungus  with  an  average  inhibition  percentage  of Trichoderma  sp.  against  White  Root  Fungus  at  8  HSI  the  highest  was  obtained  in  the  T2 treatment which was 76.65% and the lowest was in the T0 treatment which was 2.86%. The growth area of Trichoderma sp. the highest at 8 HSI was found in the T2 treatment which was 42.64 cm and the lowest was in the T0 treatment which was 2.86 cm.
Keywords: Hevea brasiliensis Muell. Arg, Rigidoporus microporus , Trichoderma sp.

## ABSTRAK
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  efektivitas  dari  beberapa  isolat Trichoderma sp. dalam  mengendalikan  penyakit  jamur  akar  putih  (JAP)  pada  tanaman  karet,  mengetahui persentase  daya  hambat  dari  berbagai  isolat Trichoderma sp.  terhadap  penyakit  JAP    pada tanaman  karet,  serta  mengetahui  luas  pertumbuhan Trichoderma sp.  terhadap  penyakit  JAP menggunakan  media  Potato  Dextrosa  Agar  (PDA)  dengan  metode Dual  Culture .  Penyakit pada  tanaman  merupakan  faktor  pembatas  terhadap  pertumbuhan  dan  perkembangan tanaman,  penyakit    JAP  yang  disebabkan  oleh  patogen Rigidoporus  lignosus telah  banyak dilaporkan  menimbulkan  kerugian  pada  tanaman  karet.  Pengendalian  hayati  dengan Trichoderma sp . merupakan  pengendalian  penyakit  dengan  cara  melibatkan  manipulasi musuh  alami  yang  menguntungkan  untuk  memperoleh  pengurangan  jumlah  populasi  dan status  hama  serta  penyakit  di  lapangan.  Penelitian  ini  menggunakan  metode  Eksperimen  di Laboratorium  Unit  Riset  Sungei  Putih  dengan  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
(RAL) non faktorial yang terdiri dari 4 ulangan sebagai perlakuan adalah isolat jamur endofit Trichoderma sp.  dan  isolat  yang  diuji  antagonismenya  adalah  JAP.  Perlakuan  T2 memperoleh  keefektivitasan  yang  baik  dalam  menekan  pertumbuhan  Jamur  Akar  Putih dengan  rerata  persentase  hambatan  pada  8  HSI  tertinggi  didapat  pada  perlakuan  T2  yaitu 76,65%  dan  terendah  pada  perlakuan  T0    yaitu  2,86% . Luas  pertumbuhan Trichoderma sp. tertinggi pada 8 HSI dijumpai pada perlakuan T2 yaitu 42,64 cm dan terendah pada perlakuan T0 yaitu 2,86 cm.
Kata kunci : Hevea brasiliensis Muell. Arg, Rigidoporus microporus, Trichoderma sp.

## PENDAHULUAN
Tanaman karet merupakan komoditas tanaman  perkebunan  yang  memiliki  peran besar  didalam  perekonomian  Indonesia dengan  hasil  utama  lateks  yang  digunakan terutama  sebagai  bahan  baku  industri  karet (Pusari dkk. , 2014). Tanaman karet merupakan  salah  satu  komoditi  perkebunan yang  memiliki  prospek  yang  cerah  karena memiliki nilai ekonomi yang penting sebagai sumber devisa negara non migas  dan ekspor karet  Indonesia  selama  20  tahun  terakhir terus  menunjukkan  adanya  peningkatan.  Di Indonesia karet merupakan tanaman perkebunan  penting  terutama  ditempat- tempat  penanaman  karet  seperti  Jambi, Sumatera, Riau, Kalimantan Barat, dan Jawa Barat. Permintaan pasar dunia terhadap karet alam semakin meningkat sehingga memberikan  peluang  yang  tinggi  bagi Indonesia  untuk  terus  meningkat  produksi dan volume ekspor (Ekanantari, 2015).
Penyakit  pada  tanaman  merupakan faktor  pembatas  terhadap  pertumbuhan  dan perkembangan tanaman. Metode pengendalian  yang  sering  dilakukan  oleh para petani untuk mengatasi masalah tersebut ialah  dengan  penggunaan  bahan  pestisida sintetik  yang  melebihi  dosis  anjuran  dan digunakan  secara  terus  menerus  sehingga mengakibatkan  akumulasi  pestisida  ditanah. Akumulasi pestisida yang tinggi menimbulkan  dampak  negatif  terhadap
lingkungan bahkan berdampak pada konsumen,  berkurangnya  mikroorganisme tanah,  dan  kerentanan  tanaman  (Miftakhun, 2017). Produktivitas tanaman karet Indonesia masih  sangat  rendah  hal  ini  dikarenakan adanya serangan penyakit Jamur Akar Putih, penyakit ini merupakan penyakit yang sangat penting pada tanaman karet, karena penyakit ini  dapat  mengakibatkan  kematian  tanaman dalam  intensitas  yang  tinggi  terutama  pada tanaman  yang  berumur  2  sampai  6  tahun. Hampir  seluruh  bagian  tanaman  karet  dapat terinfeksi  sejumlah  penyakit  pada  tanaman, salah  satunya  penyakit  Jamur  Akar  Putih yang  disebabkan  oleh  patogen Rigidoporus lignosus telah banyak dilaporkan menimbulkan  kerugian  pada  tanaman  karet dan  dapat  menjadi  penyebab  menurunnya produksi  karet  dengan  kehilangan  hasil mencapai  3-5  %  pada  perkebunan  besar  dan 5-15%  pada  perkebunan  rakyat.  Selain mengakibatkan  kehilangan  produksi  karena kerusakan tanaman, akibat lain dari terinfeksinya  pathogen  ini  adalah  secara ekonomis  yaitu  memerlukan  biaya  tinggi dalam  pengendaliannya  (Balai  Penelitian Tanaman Industri dan Penyegar, 2014).
Pengendalian hayati (biological control) merupakan  pengendalian  penyakit dengan  cara  melibatkan  manipulasi  musuh alami yang menguntungkan untuk memperoleh  pengurangan  jumlah  populasi dan  status  hama  serta  penyakit  di  lapangan.
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
Jamur entomopatogenik dan jamur antagonis merupakan beberapa jenis agens hayati yang biasa dimanfaatkan sebagai upaya pengendalian  secara  hayati.  Beberapa  alasan mengapa  jamur  tersebut  menjadi  pilihan sebagai  pengendalian  secara  hayati  adalah karena  jamur-jamur  tersebut  mempunyai kapasitas  reproduksi  yang  tinggi,  siklus hidup  yang  singkat,  dapat  membentuk  spora yang mampu bertahan lama. di  alam bahkan dalam  kondisi  ekstrim,  disamping  itu  juga relatif  aman  digunakan,  cukup  mudah diproduksi, cocok dengan berbagai insektisida,  dan  mungkin  menimbulkan resistensi yang sangat kecil (Kansrini, 2015).
Agensia  hayati  berpengaruh  terhadap tanaman, patogen serta lingkungan. Pengaruh  agensia  hayati  terhadap  tanaman yaitu  kemampuan  melindungi  tanaman  atau mendukung  pertumbuhan  tanaman  melalui salah  satu  mekanismenya  yaitu  mendukung pertumbuhan  pada  tanaman.  Sedangkan tanaman  menyediakan  nutrisi  bagi  agensia pengendali  hayati  dalam  bentuk  eksudat akar, yang sangat diperlukan untuk pertumbuhannya. Sedangkan pengaruh agensia  hayati  terhadap  patogen  sangat  jelas yaitu  menekan  daya  tahan  dan  pertumbuhan patogen.  Penekanan  ini  akan  menyebabkan penurunan  populasi  patogen  di  alam, lingkungan  hidup  baik  itu  biotik  maupun abiotik yang sangat berperan dalam keberlangsungan  hidup  agensia  pengendali hayati.  Dampak  dari  pengaplikasian  agens hayati  tidak  langsung  terlihat  dalam  waktu yang  singkat,  tetapi  membutuhkan  waktu yang  lama  untuk  memberikan  kestabilan lingkungan  dalam  menekan  perkembangan infeksi  patogen  serta  menurunkan  intensitas penyakit. Agens hayati yang telah digunakan untuk  mengendalikan  penyakit  jamur  akar putih diantaranya dari kelompok jamur yaitu
Trichoderma, Hypocrea, Aspergillus, Chaetomium,  Botryodiplodia,  Penicillium, Paecilomyces, dan Eupenicillium (Kusdiana dkk. 2015;  Ubogu  2013),  sedangkan  dari kelompok bakteri yaitu Bacillus dan Pseudomonas (Nasrun  dan  Nurmansyah 2015),  dan  aktinobakteri  yaitu Streptomyces (Nakaew dkk. 2015).
Trichoderma sp . merupakan  jamur yang  paling  umum  ditemui  dalam  tanah khususnya  tanah  dengan  kandungan  bahan organik  yang  tinggi,  jenis  cendawan  ini merupakan  salah  satu  jenis  jamur  patogenik atau dapat  membunuh jamur patogen.  Jamur ini  dapat  diisolasi  dari  akar  tanaman  secara endofit,  serasah  tanah,  rizosfer  berbagai tanaman,  jaringan  tanaman  yang  sehat, biomassa  jamur  dan  kayu  mati  serta  banyak digunakan sebagai biofungisida pada beberapa  komoditi  seperti  tebu,  jagung, kubis, lada dan kakao (Papavizas , 1985) dan pada  tanaman  cengkeh  (Suanda,  2017). Trichoderma sp.  ini  mempunyai  aktivitas antifungal  sehingga  dikembangkan  sebagai sebuah cara untuk menggusur jamur penyebab  penyakit  pada  tanaman,  jamur  ini juga  mempunyai  kemampuan  berkembang biak  dan  daya  adaptasi  yang  lebih  baik dibandingkan jamur penyebab penyakit pada tanaman.  Beberapa Trichoderma sp.  seperti T.  harzianum,  T.  atroviride,  T.  viride,  T. virens dan T. koningii telah diketahui sebagai agensia biokontrol yang memiliki kemampuan
untuk menghambat
pertumbuhan patogen dalam tanah, sehingga meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  inang (Anuradha dkk., 2014).
Jamur  Trichoderma  sp.  diketahui  dapat menekan pertumbuhan penyakit bulai (Alfizar  dkk,  2013).  Namun  tidak  semua jamur Trichoderma sp. mempunyai kemampuan  untuk  mengendalikan  jamur
Uji Efektivitas Beberapa Isolat ....
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
patogen.  Berkenaan  dengan  hal  tersebut maka  penulis  melakukan  penelitian  lebih lanjut mengenai bagaimana cara pengendalian  penyakit  tanaman  jamur  akar putih  dengan  cara  pengendalian  hayati  yaitu dengan  memanfaatkan  jamur Trichcoderma sp.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada bulan  September  s/d  bulan  November  2022 di  Laboratorium  Proteksi  Tanaman  di  Unit Riset  Sungei  Putih,  Kecamatan  Galang, Kabupaten  Deli  Serdang  Sumatera  Utara. Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini yaitu  250  gram  kentang,  20  gram  dextrose, 20  gram  agar,  dan  1000  ml  aquades  steril, alkohol  70%,  spirtus,  isolat  jamur  antagonis yaitu Trichoderma  koningii,  Trichoderma viride , Trichoderma  virens , dan  Isolat  jamur patogen  tanaman  yaitu  Jamur  Akar  Putih (Rigidoporus microporus) . Alat yang digunakan  dalam  penelitian  ini  yaitu  cawan petri,  kertas  saring,  bunsen,  erlenmeyer, jarum  ose,  pinset,  bor  gabus,  planimeter, beaker  glass  (500  dan  1000  ml),  gelas  ukur 100  ml,  pisau,  gunting,  saringan,  panci, kompor  gas,  spatula,  objek  glass,  cover glass, mikropipet, timbangan digital, autokclave,  LAFC  (Laminar  Air  Flow Cabinet),  mikroskop,  kamera  digital,  korek api,  alat  tulis,  tisu  steril,  plastik  wrap, aluminium foil, serbet, ember, dan kapas.
Penelitian  ini  menggunakan  metode eksperimen  di  laboratorium  menggunakan media padat Potato Dextrose Agar dilakukan dengan  menggunakan  Rancangan  Acak Lengkap  (RAL)  non  faktorial  yang  terdiri dari  4  ulangan  sebagai  perlakuan  adalah isolat  jamur  antagonis Trichoderma sp.  dan isolat  yang  diuji  antagonismenya  adalah jamur  akar  putih  ( Rigidoporus  microporus ). Data  yang  diperoleh  dianalisis  secara
statistik  dengan  sidik  ragam  (ANOVA),  jika pada  hasil  analisis  berpengaruh  nyata  maka akan  dilanjutkan  dengan  Uji  Duncan  pada taraf  5%.  Perlakuan  yang  diuji  terdiri  dari: T0  =  Kontrol  ( Rigidoporus  microporus );  T1 = Trichoderma  koningii vs Rigidoporus microporus ;  T2  = Trichoderma  virens vs Rigidoporus microporus ; T3 = Trichoderma viride vs Rigidoporus microporus.
Tahap pelaksanaan penelitian

## 1. Sterilisasi Laboratorium dan Alat Penelitian
Sebelum  memulai  penelitian,  Ruang Laboratorium  di  bersihkan  terlebih  dahulu supaya tidak terjadi kontaminasi pada media penelitian  yang  akan  dibuat.  Kemudian  alat yang tahan panas disterilisasikan menggunakan  autoclave  dengan  suhu  121⁰C selama  120  menit  pada  tekanan  1,5  atm (Indrawati dan Fakhrudin, 2016) dan alat lain yang tidak tahan panas disterilkan menggunakan alkohol 70%.

## 2. Pembuatan Media Potato Dextrose Agar (PDA)
Potato  Dextrose  Agar  merupakan media umum  yang digunakan sebagai media tumbuh  jamur  di  laboratorium  karena memiliki  pH  yang  rendah  (pH  4,5  sampai 5,6)  sehingga  menghambat  pertumbuhan bakteri  yang membutuhkan lingkungan  yang netral  dengan  pH  7,0  dan  suhu  optimum untuk pertumbuhan antara 25-30⁰C (Cappuccino dkk .  2013).  Untuk  membuat media  PDA,  bahan  yang  digunakan  adalah 250  gram  kentang,  20  gram  dextrose,  20 gram  agar,  dan  1000  ml  aquades.  Cara pembuatannya  yaitu  mengupas  kentang terlebih  dahulu  kemudian  memotong  tipis- tipis  supaya  lebih  cepat  matang,  kentang yang  telah  dipotong  kemudian  dimasukkan ke  dalam  panci  serbaguna  yang  telah  diisi aquades,  dan  dimasak  selama  20  menit.
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
Kemudian kentang disaring dengan menggunakan saringan dan diambil ekstraknya,  kemudian  ekstarak  kentang tersebut  dicampurkan  dengan  20  gram  agar dan  20  gram  dextrose  dan  dimasak  kembali hingga  tercampur  merata.  Setelah  semua bahan  sudah  masak,  lalu  dimasukkan  ke dalam  Erlenmeyer  dan  diaduk  sampai homogen.  Erlenmeyer  disumbat  dengan menggunakan  kapas  dan  ditutup  dengan aluminium  foil,  kemudian  dimasukkan  ke dalam autoclave suhu  121⁰C dengan tekanan 1 atm selama 15 menit, kemudian didinginkan.
3. Isolasi Jamur Antagonis Trichoderma sp .
Isolasi  dilakukan  untuk  mendapatkan isolat  –  isolat  suatu  senyawa  sehingga  dapat mempermudah  untuk  melakukan  identifikasi senyawa  – senyawa.  Isolasi  jamur dilakukan dengan peremajaan isolat jamur Trichoderma  koningii,  Trichoderma  viride, dan  Trichoderma  virens .  Isolat  jamur (biakan  murni) Trichoderma sp.  didapatkan dari  koleksi  laboratorium  Proteksi  Tanaman Unit  Riset  Sungei  Putih.  Isolat  jamur diremajakan  dengan  cara  memindahkan miselium yang tumbuh dari biakan induk dan ditumbuhkan kembali pada media PDA baru. Dengan  mengambil  satu  ose  dari  biakan isolat  masing-masing Trichoderma sp.,  lalu diletakkan  ke  dalam  cawan  petri  yang  berisi media  PDA  kemudian  cawan  petri  ditutup dengan  plastik  warp,  dan  hasil  purifikasi diinkubasi sampai 7 hari.
4. Isolasi  Jamur  Patogen  Jamur  Akar Putih
Isolasi jamur  dilakukan dengan peremajaan isolat jamur patogen
Rigidoporus microporus . Isolat jamur (biakan  murni)  didapatkan  dari  koleksi laboratorium  Proteksi  Tanaman  Unit  Riset
Sungei  Putih.  Isolat  jamur  diremajakan dengan  cara  memindahkan  miselium  yang tumbuh  dari  biakan  induk  dan  ditumbuhkan kembali  pada  media  PDA  baru.  Dengan mengambil  satu  ose  dari  biakan  isolat  JAP, lalu  diletakkan  ke  dalam  media  PDA  dan cawan  petri  ditutup  dengan  plastik  warp, kemudian  hasil  purifikasi  diinkubasi  sampai 7 hari.
Parameter  yang  diamati  sebagai berikut:
1. Identifikasi Jamur Antagonis Trichoderma sp. Pengamatan identifikasi jamur antagonis Trichoderma sp.  dilakukan  pada hari  ke  8  Hari  Setelah  Inokulasi  (HSI) dengan  2  cara  yaitu  :  Secara  makrokopis dilakukan secara visual dengan menggunakan  mata  secara  langsung  dan Identifikasi  secara  mikrokopis  dilakukan dengan  menggunakan  mikroskop  meliputi bentuk konidiofor dan bentuk fialidnya.
2. Identifikasi  Jamur  Patogen  Jamur Akar Putih
Penyebab penyakit berupa jamur patogen hasil uji patogenisitas yang diidentifikasi secara makrokopis dan mikrokopis  berdasarkan  buku  “ Illustrated Genera of Imperfect Fungi ” oleh Barnett dan Hunter  (2000).  Pengamatan  dilakukan  pada hari  ke  8  Hari  Setelah  Inokulasi  (HSI) dengan 2 cara yaitu : Pengamatan identifikasi secara  makrokopis  dilakukan  secara  visual dengan  menggunakan  mata  secara  langsung dan identifikasi mikrokopis dilakukan dengan  menggunakan  mikroskop  meliputi bentuk  spora  dan  miselium  jamur  yang tumbuh.  Apabila  ditemukan  bentuk  konidia yang  sama  dengan  hasil  isolasi  sebelumnya berarti memang benar jamur patogen tersebut penyebab penyakitnya.
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
3. Uji Antagonis Daya Hambat dengan
Metode Dual Culture
Pengujian  daya  antagonis  dilakukan pada jamur Trichoderma koningii, Trichoderma  viride,  Trichoderma  virens terhadap jamur patogen Rigidoporus microporus dengan cara mengambil masing-
masing  pada  biakan  purifikasi jamur antagonis
Trichoderma
koningii,
Trichoderma viride, Trichoderma virens dan jamur patogen dengan cork borer (diameter 5 mm),  kemudian  diletakkan  berhadapan  pada cawan  petri  yang  berdiameter  9  cm  dalam satu  cawan  petri,  menggunakan  media  PDA dengan  menggunakan  metode Dual  Culture kemudian  pengamatan  dilakukan  pada  2,  4, 6, dan 8 Hari Setelah Inokulasi (HSI).

## Keterangan:
P : Koloni cendawan patogen R. microporus
A : Koloni cendawan kandidat antagonis Trichoderma sp. R1  : Jari-jari koloni R. microporus yang tumbuh berlawanan dengan mikroorganisme jamur antagonis
R2  :Jari-jari  koloni R.  microporus yang  tumbuh  ke  arah  mikroorganisme    jamur  Antagonis (Seema dan Devaki, 2012)
Pengamatan persentase hambatan pertumbuhan  jamur  dihitung  berdasarkan rumus menurut Ningsih dkk. (2016), pengukuran persentase daya hambat diperoleh melalui pengukuran jari-jari pertumbuhan  koloni  jamur  patogen  yang mendekati  dan  menjauhi  koloni  jamur antagonis dihitung menggunakan rumus :
DH = (R1-R2) x 100 %

## R1
Keterangan:
DH  : Persentase Daya Hambat (100%) R1  :  Jari-jari  koloni R.  microporus yang tumbuh berlawanan dengan mikroorganisme jamur antagonis
R2  :  Jari-jari  koloni R.  microporus yang tumbuh  ke  arah  mikroorganisme    jamur Antagonis

## 4. Menghitung Luas Pertumbuhan
Trichoderma sp. terhadap JAP Untuk  menghitung  luas  pertumbuhan Trichoderma sp.  terhadap  Jamur  Akar  Putih dilakukan  pada  pengamatan  2,  4,  6,  dan  8 Hari  Setelah  Inokulasi  (HSI),  dengan mengukur luas pertumbuhan jamur Trichoderma sp.  menggunakan  alat  ukur yaitu Planimeter yang tersedia di laboratorium  Unit  Riset  Sungei  Putih.  Cara penggunaannya yaitu dengan cara
menggambar
luasan
pertumbuhan Trichoderma sp.  terhadap  JAP  terlebih dahulu  di  atas  sampul  bening  dan  digambar menggunakan  spidol  permanen  mengikuti luas pertumbuhannya. Kemudian meletakkan Planimeter  diatas  meja  dan  mengatur  alat ukur  tersebut.  Sedangkan  untuk  mengukur luasannya  yaitu  pertama  mengatur  angka
R1 P    R2 A
3 cm       3cm CMCM
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
pada  piringan  skala  menjadi  0  dan  di  roda skala  dibuat  ke  angka  0  juga,  kemudian menempatkan titik tersebut pada garis/ batas wilayah  yang  akan  dicari  luasannya.  Lalu menempatkan  jarum  pelacak  mulai  dari  titik awal  yang  telah  ditentukan,  kemudian memutar roda ukur maju atau mundur sesuai dengan  luas  pertumbuhan Trichoderma sp. yang  telah  digambar  sebelumnya.  Terakhir yaitu  melihat  angka  pada  piringan  dan  roda skala yang telah muncul pada planimeter.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Identifikasi Jamur Antagonis Trichoderma sp.
Hasil  identifikasi  jamur  antagonis Trichoderma sp.  pada  hari  ke  8  HSI memiliki ciri makroskopis yang hampir sama yakni  setiap  isolat  mempunyai  koloni  yang berbentuk bulat, pola pertumbuhan konsentris, dan pertumbuhan awal koloninya berwarna  putih,  kemudian  putih  kehijauan, hijau  muda,  hijau,  sampai  warna  hijau  tua. Isolat jamur antagonis Trichoderma sp. yang telah  di  isolasi  dapat  memenuhi  cawan  petri berdiameter  9  cm  pada  8  HSI.  Karakteristik yang  telah  diamati  secara  makroskopis setelah  8  HSI  dapat  dilihat  pada  Tabel  1
Tabel 1 . Karakteristik makroskopis isolat Trichoderma sp.
Kode Isolat Warna Koloni Ketebalan Koloni Pola Pertumbuhan Koloni T1 ( Trichoderma koningii vs JAP) Hijau Tebal dan Padat Konsentris T2 ( Trichoderma virens vs JAP) Hijau Tua Tebal dan Padat Konsentris T3 ( Trichoderma viride vs JAP) Hijau Muda Tebal dan Padat Konsentris Sedangkan  hasil  identifikasi  jamur antagonis Trichoderma
sp. secara mikroskopis  dilakukan  pengamatan  dengan menggunakan mikroskop supaya hasil identifikasi  yang  diperoleh  lebih  jelas,  yaitu
dengan  melihat  bentuk  percabangan  spora dan  miselium  dari  isolat Trichoderma sp. Karakteristik  dari  masing-masing  isolat Trichoderma sp.  dapat dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2 . Karakteristik mikroskopis isolat Trichoderma sp.
Kode Isolat Bentuk Konidiofor Bentuk Fialid T1 ( Trichoderma koningii vs JAP) Bercabang Pendek,  dan vertical T2 ( Trichoderma virens vs JAP) Bercabang Pendek, berada disetiap konidiofor T3 ( Trichoderma viride vs JAP) Bercabang Vertikal dan pendek
Trichoderma sp. adalah jamur saprofit  tanah  yang  secara  alami  menyerang banyak  jenis  jamur  patogen  penyebab penyakit tanaman, memiliki spectrum pengendalian  yang  luas,  serta  memiliki pertumbuhan  yang  cepat  (Berlian, dkk. ,
2013).  Menurut  Noerfitryani  dan  Hamzah (2018),  ciri-ciri  morfologi  makroskopik jamur Trichoderma pada  media  PDA,  yakni permukaan  berwarna  hijau  terang  hingga hijau  gelap,  tekstur  seperti  kapas,  memiliki zonasi konsentris, sedangkan ciri-ciri
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
mikroskopik konidia berbentuk bulat, dengan hifa bersepta dan hialin.
Gambar 1 . Isolat Trichoderma koningii. (A). koloni pada media PDA; (B). konodia hasil penelitian;  (1)  konodia , (2)  konodiofor , (3)  hifa ; (C).  konodia Trichoderma  koningii menurut Wirawan, dkk. (2014).
Gambar 1 memperlihatkan koloni Trichoderma  koningii pada  saat  awal inkubasi,  mula-mula  warna  permukaan koloni  yakni  berwarna  putih  dan  berubah menjadi  hijau  kekuningan  saat  di  inkubasi lanjut,  berbentuk  konidiofor  tegak  dan bercabang fialidnya pendek dan vertikal. Hal
ini  didukung  oleh  (Gusnawanty dkk ,  2014) yang menyatakan bahwa koloni Trichoderma koningii awalnya  berwarna  putih  kehijauan, berbentuk  bulat,  bentuk  konidiofor  yang dikembangkan pada struktur bantal berbentuk  tegak  bercabang  yang  tersusun vertikal fialid pendek dan tebal.
Gambar 2 . Isolat Trichoderma virens. (A). koloni pada media PDA; (B). konodia konidiofor fialid hasil penelitian; (1) konodia , (2) hifa , (3) konidiofor ; (C). konodia
Trichoderma virens menurut Kubicek dan Harman (2002)
Gambar 2 memperlihatkan koloni Trichoderma  virens pada  saat  awal  inkubasi pada saat awal inkubasi, koloni Trichoderma virens isolat  yang  telah  dipurifikasi  di medium  PDA  mula-mula  warna  permukaan koloni  yakni  berwarna  putih  dan  berubah warna  menjadi  hijau  tua  pada  saat  di inkubasi  lanjut,  berbentuk  karang  lingkaran dengan pusat di tengah dan menyebar ke tepi petri dengan ketebalan koloni tebal dan padat serta pola pertumbuhannya konsentris.
Berbentuk  konidiofor  bercabang,  fialidnya pendek berada disetiap konidiofor.
Gambar  3  memperlihatkan  koloni Trichoderma  viride pada  saat  awal  inkubasi berwarna  putih  dan  berubah  menjadi  hijau muda  saat  di  inkubasi  lanjut,  berbentuk karang lingkaran dengan pusat di tengah dan menyebar  ke  tepi  petri  dengan  ketebalan yang tebal dan padat serta pola pertumbuhan konsentris,  konidia  yang  didapat  pada  hasil identifikasi berbentuk bulat, dengan konidiofor  tegak  bercabang,  fialid  vertikal
A B C 1 2 3 A B C 2 1 3
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
dan pendek. Hal ini didukung oleh Dewi dkk (2015)  yang  menyatakan  bahwa  koloni  dari jamur  antagonis Trichoderma  viride yang awalnya  berwarna  putih  kehijauan,  bentuk
konidiofor yang dikembangkan pada struktur bantal  berbentuk  tegak,  bercabang  yang tersusun  vertikal  fialid  pendek  dan  tebal.
Gambar 3 . Isolat Trichoderma viride. (A). koloni pada media PDA; (B). konodia konidiofor fialid hasil penelitian; (1) konidiofor, (2) fialid , (3) hifa ; (C).konodia Trichoderma viride menurut Dewi dkk (2015).
Identifikasi Jamur Patogen Jamur Akar Putih
Gambar  4  (A)  memperlihatkan  jamur akar  putih  disebabkan R. microporus, jamur ini  membentuk  badan  buah  mirip  topi  pada akar,  pangkal  batang,  atau  tunggul-tunggul tanaman.  Badan  buah  berwarna  jingga kekuning-kuningan, permukaan bawah badan buah  terdapat  lubang-lubang  kecil  tempat spora. Badan buah  yang tua akan mengering dan  berwarna  coklat  kekuningan  pucat  dan permukaan  bawah  bewarna  kemerahan
(Semangun,  2000).  Identifikasi  isolat  jamur patogen jamur akar putih secara makroskopis yaitu  memiliki  ciri  morfologi  permukaan koloni  jamur  datar  dan  berwarna  putih, koloni berbentuk bulat halus dan pada bagian tepi  sedikit  rata,  bentuk  miseliumnya  seperti kapas  berdiameter  koloni  9  cm  pada  media PDA pada 8 HSI seperti pada Gambar 5 (B). Sedangkan  gambar  5  (C)  merupakan  bentuk mikroskopis jamur akar putih yang  memiliki ciri konodia, konodiofor dan hifa.
Gambar 4 . Isolat R.microporus . (A). Badan buah Jamur Akar Putih pada tanaman karet; (B).
Jamur Akar Putih pada media PDA; (C). Pengamatan Jamur Akar Putih secara mikroskopis: (1) konidia, (2) hifa, (3) konidiofor
Uji Antagonis Daya Hambat dengan Metode Dual Culture Pengamatan  persentase  daya  hambat patogen  dilakukan  pada  pengamatan  2,  4,  6, dan  8  Hari  Setelah  Inokulasi  (HSI).
Pengamatan dilakukan dengan cara mengukur jari-jari koloni Rigidoporus microporus yang tumbuh berlawanan dengan mikroorganisme jamur antagonis dan jari-jari koloni Rigidoporus microporus yang tumbuh
A B C 1 3 2 A k B C
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
kearah  mikroorganisme  jamur  antagonis, kemudian  dilakukan  perhitungan  persentase hambatannya.  Hasil  analisis  persentase
hambatan  patogen  pada  uji  antagonis  daya hambat dapat dilihat pada Tabel 3.
Tabel 3 . Persentase penghambatan patogen (%) di transformasi dengan Archin
No. Perlakuan Pengamatan 2 HSI 4 HSI 6 HSI 8 HIS 1 T0 (Jamur Akar Putih) 2,86 a 2,86 a 2,86 a 2,86 a 2 T1 ( Trichoderma koningii vs JAP) 44,77 b 41,29 b 42,28 b 43,29 b 3 T2 ( Trichoderma virens vs JAP) 46,36 b 56,07 c 62,16 c 76,65 c 4 T3 ( Trichoderma viride vs JAP) 46,11 b 52,33 c 61,41 c 69,74 c
Keterangan : Angka yang diikuti huruf-huruf yang sama pada kolom yang sama, menunjukkan berbeda tidak nyata berdasarkan uji Duncan taraf 5%.
Data  hasil  pengamatan  persentase daya hambat di Transformasi dengan Archin Pengamatan  daya  hambat  pada  2 HSI  tertinggi  ditemui  pada  perlakuan  T2 dengan  rerata  persentase  hambatan  yaitu 46,36%  berdasarkan  hasil  uji  Duncan  pada taraf 5% perlakuan T2 berbeda nyata dengan perlakuan  T0,  namun  tidak  berbeda  nyata dengan  perlakuan  T1  dan  T3.  Pada pengamatan  4  HSI,  6  HSI  dan  8  HSI  daya hambat  tertinggi  ditemui  pada  perlakuan yang  sama  yaitu  T2  dengan  persentase hambatan  sebesar  56,07%,  62,16%,  dan 76,65%  berdasarkan  hasil  uji  Duncan  pada taraf 5% perlakuan T2 berbeda nyata dengan perlakuan  T0,  namun  tidak  berbeda  nyata dengan  perlakuan  T1  dan  T3.  Hal  ini diperkuat oleh Suwandi (2008), bahwa agens hayati T. virens dapat menekan penyakit JAP pada bibit karet karena bersifat mikroparasit. Trichoderma sp.  memiliki  peranan  yang sangat penting untuk menenkan pertumbuhan  patogen  tanaman,  khususnya jamur tular tanah (Hamawi dkk. 2015)
Rerata  persentase  hambatan  pada perlakuan T0 berbeda nyata dengan perlakuan  lainnya.  Pada  perlakuan  T0 memiliki  rerata  persentase  hambatan  pada  8 HSI  paling  rendah  yaitu  2,86%  Hal  ini
dikarenakan  pada  perlakuan  T0  yang ditumbuhkan pada cawan petri tanpa adanya agens  antagonis  yang  akan  menghambat pertumbuhannya tersebut dan juga dikarenakan  adanya  kandungan  nutrisi  yang ada  pada  media  PDA,  sehingga  memenuhi kebutuhan  pertumbuhan  patogen  karena media  PDA  tersebut  termasuk  media  semi sintetik  yang  tersusun  atas  bahan  alami  dan bahan  sintesis  yaitu  kentang,  gula  atau dextrose  serta  agar-agar.  Masing-masing komponen  tersebut  sangat  diperlukan  untuk pertumbuhan dan perkembangbiakan mikroorganisme,  terutama  jamur  (Octavia dan Wantini, 2017).  Kelompok
jamur
Trichoderma mempunyai mekanisme antagonis kompetisi, antibiosis dan mikroparasit yang efektif menekan perkembangan patogen.
Menghitung Luas Pertumbuhan Trichoderma sp. terhadap JAP
Pengamatan luas pertumbuhan Trichoderma sp.  di  Transformasi  dengan Archin
.  Hasil  pengamatan  luas pertumbuhan Trichoderma sp.  terhadap  JAP pada  2  HSI  perlakuan  T2  memperoleh  luas pertumbuhan  tertinggi  yaitu  26,36  cm berdasarkan  hasil  uji  duncan  pada  taraf  5% perlakuan T2 berbeda nyata dengan
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
perlakuan  T0,  namun  tidak  berbeda  nyata dengan  perlakuan  T1  dan  T3.  Pada pengamatan  4  HSI  luas  pertumbuhan tertinggi  diperoleh  pada  perlakuan  T2  yaitu 37,04 cm berdasarkan hasil uji Duncan pada taraf 5% perlakuan T2 berbeda nyata dengan perlakuan  T0,  T1  dan  T3.  Sedangkan  pada pengamatan  6  HSI  dan  8  HSI  perlakuan  T2 juga memperoleh luas
pertumbuah Trichoderma tertinggi yaitu 40,93 cm dan 42,64 cm . Pada perlakuan T0
memperoleh  luas  pertumbuhan  yaitu  2,86 cm,  hal  ini  dikarenakan  tidak  adanya  jamur antagonis  yang  ditumbuhkan  bersama  dalam satu  media  PDA  sehingga  tidak  adanya hambatan untuk JAP terus tumbuh. Soenartiningsih dkk .  (2008),  menyatakan bahwa jamur  yang ditumbuhkan pada media yang diberikan zat penghambat, maka tingkat virulensinya akan menurun, dan memperlambat infeksi serta sporulasinya.
Tabel  4 .  Luas  pertumbuhan Trichoderma sp.  terhadap  Jamur  akar  putih  di  transformasi dengan Archin
No. Perlakuan Pengamatan 2 HSI 4 HSI 6 HSI 8 HIS 1 T0 (Jamur Akar Putih) 2,86 a 2,86 a 2,86 a 2,86 a 2 T1 ( Trichoderma koningii vs JAP) 17,18 b 28,97 b 29,31 b 27,28 b 3 T2 ( Trichoderma virens vs JAP) 26,36 b 37,04 c 40,93 c 42,64 c 4 T3 ( Trichoderma viride vs JAP) 19,06 b 33,52 bc 38,22 c 41,05 c
Keterangan : Angka yang diikuti huruf-huruf yang sama pada kolom yang sama, menunjukkan berbeda tidak nyata berdasarkan uji duncan taraf 5%.
Perkembangan  luas  koloni  jamur patogen  terhambat  dengan  adanya  jamur antagonis.  Hal  ini  diduga  karena  adanya pengaruh dari Trichoderma sp. yang menghambat  pertumbuhan  patogen  tersebut melalui  mekanisme  mikroparasit,  antibiosis, dan  persaingan  ruang  dan  nutrisi.  Menurut Berlian dkk . (2013) mekanisme pengendalian jamur  antagonis  terhadap  jamur  patogen yaitu  dengan  kompetisi  terhadap  tempat tumbuh  dan  nutrisi,  antibiosis,  parasitisme. Jamur antagonis yang memiliki luas pertumbuhan  yang  lebih  besar  dibandingkan dengan  jamur  lain  mempunyai  daya  hambat yang  besar  terhadap  perkembangan  jamur patogen. Dengan pertumbuhan jamur antagonis yang lebih cepat dari pada patogen R.  microporus ,  jamur  antagonis  tersebut dapat digunakan sebagai pengendalian pertumbuhan patogen tersebut. Hal ini sesuai
dengan  pendapat  Sukapiring  (2015)  yang menyatakan  bahwa  jamur  antagonis  yang diisolasi dari suatu tanaman dapat menghasilkan  metabolit  yang  sama  dengan tanaman  inangnya  bahkan  dalam  jumlah yang  lebih  banyak.  Senyawa  metabolit  yang dihasilkan  jamur  antagonis  adalah  senyawa bioaktif dan dapat berguna dalam menghambat dan mengendalikan pertumbuhan  jamur  patogen  terutama  pada penyakit Jamur Akar Putih.

## KESIMPULAN
Hasil kesimpulan menunjukkan bahwa Isolat Trichoderma virens yang paling baik dari uji antagonis menggunakan metode dual culture dengan memperoleh keefektivitasan dalam menekan pertumbuhan R. microporus dengan memiliki  kemampuan terbaik  dalam  menghambat  pertumbuhan R. microporus pada  8  HSI  yaitu  dengan
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
persentase  hambatan  76,65%  dan  terendah pada  perlakuan  T0  yaitu  2,86%.  Pada  luas pertumbuhan Trichoderma sp.  terhadap Jamur Akar Putih Perlakuan T2 memperoleh luas  pertumbuhan  tertinggi  pada  8  HSI sebesar  42,64  cm,  sedangkan  yang  terendah adalah  T0  sebesar  2,86  cm.  Perlu  dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai uji efektivitas Trichoderma  virens terhadap penyakit  JAP  dengan  pengujian  dilapangan, pada  lahan  terbuka  langsung  agar  lebih diketahui  pemanfaatan  agens  antagonis tersebut  sesuai  dengan  kejadian  yang  ada  di lapangan.

## DAFTAR PUSTAKA
Alfizar,  Marlina,  &  F.  Susanti.  (2013). Kemampuan  antagonis  Trichoderma Sp.  terhadap  beberapa  jamur  patogen in vitro. Jurnal Floratek, 8(1), 45-51 Anuradha,  S.,  Vipul,  K.,  Mohammad,  S., Muksesh, S., Sonika, P., & Sharma, A. (2014).  Role  of  secondary  metabolites produced  by  commercial  Trichoderma species  and  their  effect  against  soil borne  pathogens. Journal  Biosens , 3(2).
Balai  Penelitian  Tanaman  Industri  dan Penyegar.  (2014). Jamur  Akar  Putih Penyakit  Berbahaya  pada  Perkebunan Karet .
Barnett,  H.  L.,  &  Hunter,  B.  B.  (2000 ).
Illustrated Genera of Imperfect Fungi .(4th  edn.),  Burgess  Pub.  Co. Minneapolis, 218.
Berlian, I., Setyawan, B., & Hadi, H. (2013). Mekanisme  antagonism  Trichoderma sp.  terhadap  beberapa  patogen  tular tanah. Warta Perkaretan, 32(2),74-82 Cappuccino,  James  G.,  Sherman,  &  Natalie. (2013). Manual  Laboratorium .  Jurnal Biologi. Jakarta: EGC
Ekanantari.
(2015). Outlook Karet
Komoditas Pertanian
Subsektor
Perkebunan .  Pusat  Data  dan  Sistem
Informasi Pertanian. Jakarta.
Gusnawaty  HS,  M  Taufik,  L  Triana,  &
Asniah. (2014). Karakterisasi
morfologis  Trichoderma  sp.  indigenus Sulawesi Tenggara. Jurnal Agroteknos , 4(2), 88-94.
Indrawati,  I.,  &  Fakhrudin,  S.  D.  (2016).
Isolasi  dan  identifikasi  jamur  patogen pada  air  sumur  dan  air  sungai  di Pemukiman Warga Desa Karangwangi,
Cianjur,  Jawa  Barat. Jurnal  Biodjati ,
1(1), 27-38.
Kansrini, Y. (2015). Uji berbagai jenis media perbanyakan  terhadap  perkembangan jamur Beauveria bassiana di Laboratorium. Jurnal Agrica Ekstensia , (9)1, 34-39. Kubicek  CP,  &  Harman  GE.  (2002).
Trichoderma  and  Gliocladium.  Basic Biology, Taxonomy and Genetic . London: Taylor and Francis.
Kusdiana,  A.  P.  J.,  Munir,  M.,  & Suryaningtyas,  H.  (2015).  Pengujian biofungisida  berbasis  mikroorganisme antagonis untuk pengendalian penyakit jamur  akar  putih  pada  tanaman  karet.
Jurnal Penelitian Karet , 143-156. Miftakhun.  (2017). Uji  Efektivitas  Berbagai
Media Selektif Untuk Isolasi
Trichoderma  spp.  Dari  Tanah  Pada Berbagai Lahan yang Berbeda . Thesis, Universitas Brawijaya
Nakaew, N., Rangjaroen, C., & Sungtong, R. (2015).  Utilization  of  rhizospheric Streptomyces  for  biological  control  of Rigidoporus  sp.  causing  white  root disease  in  rubber  tree. European Journal  of  Plant  Pathology ,  142  (1), 93-105.
Nasrun,  N.,  &  Nurmansyah,  N.  (2015).
Potency of Rhizobacteria and
Botanical Fungicides to Control White Root Fungus Disease in Rubber Plant . Noerfitryani & Hamzah. (2018). Inventarisasi jenis-jenis cendawan pada rhizosfer pertanaman padi. Jurnal Galung Tropika , 7(1), 11-21.
Octavia,  A.,  &  Wantini,  S.  (2017).
Perbandingan pertumbuhan jamur
DOI: https://doi.org/10.32663/ja.v%vi%i.3614
Aspergillus  flavus  pada  media  PDA (potato  dextrose  agar)  dan  media alternatif  dari  singkong  (Manihot esculenta Crantz). Jurnal Analis Kesehatan , 6(2), 625-631.
Papavizas,  C.G.  (1985).  Trichoderma  and Gliocladium:  Biology  Ekology  and
Potential  for  Biological  Control. Ann. Rev. Phytophatology (23), 23-54. Persulessy, Elvinus R., Ferry Kondo Lembang,  &  Herman  Djidin.  (2016).
Penilaian  cara  mengajar  menggunakan rancangan  acak  lengkap. Barekeng: Jurnal  Ilmu  Matematika  dan  Terapan ,
10(1), 9-16.
Seema,  M.  &  Devaki,  N.S.  (2012).  In  vitro evaluation  of  biological  control  agent against  Rhizoctonia  solani. Journal  of Agricultural Technology , 8, 233-240.
Semangun,  H,  (2000). Penyakit-Penyakit
Tanaman  Perkebunan  di  Indonesia . Gadjah Mada University Press. Yokyakarta.
Soenartiningsih,  A.,  Talanca.,  Juniarsih.,  & Yasin,  H.  G.  (2008).  Pengujian beberapa  varietas  jagung  terhadap penyakit  busuk  pelepah  dan  bulai. Maros,  Indonesia:  Balai  Penelitian Tanaman Serealia Suanda,  I.  W.  (2017). Identifikasi  Patogen Penyakit  Akar  Putih  pada  Tanaman Cengkeh  (Syzygium  aromaticum  L.) dan  Pengendalian  Secara  Hayati . Doctoral  Dissertation,  IKIP  PGRI).
Bali. Sukapiring D N. (2015). Metabolit Cendawan Endofit Untuk Mengendalikan  Cendawan  Patogen Terbawa  Benih  Cabai  (Capsicum annum  L.) .  Thesis.  Institut  Pertanian
Bogor, Bogor.
Ubogu,  E.  E.  2013.  The  molecular  and biophysical  characterization  of  the human  blood  never  barrier:  current concepts. Journal  of  vscular  research , 50(4), 289-303.