Publisher by : Program Studi Budidaya Perairan Fakultas Pertanian Universitas Batanghari Jambi
Print ISSN 2503-4766 | Online ISSN 2597-8837 | DOI 10.33087/akuakultur.v7i2.135
Respons Stres Benih Ikan Jelawat ( Leptobarbus hoevenii Blkr) Yang di Beri Ekstrak Daun Ubi Jalar Pada Proses Transportasi
1 Sudirman, 2 Muhammad Sugihartono, dan * 2 M. Yusuf Arifin
1 Alumni Program Studi Budidaya Perairan, Fakultas Pertanian Universitas Batanghari Jambi
2 Program Studi Budidaya Perairan, Fakultas Pertanian Universitas Batang hari Jambi Jl. Slamet Riyadi, Broni Jambi, 36122. Telp. +62741 60103
*2 e-mail korespondensi : myusufarifin554@gmail.com
Abstract. The purpose of this study was to determine the effectiveness of sweet potato leaf extract as an anti-stress in the process of  transporting  jelawat  fish  (L.  hoevenii  Blkr)  fry.  The  experimental  design  used  was  a  completely  randomized  design  (CRD) with  4  doses  of  sweet  potato  leaf  extract  treatment,  namely;  Treatment  A  :  Sweet  Potato  Leaf  Extract  With  2  mL/L  Water Dosage,  Treatment  B:  Sweet  Potato  Leaf  Extract  With  4  mL/L  Water,  Treatment  C  :  Sweet  Potato  Leaf  Extract  With  6  mL/L Water, and Treatment D : Without Provision of Sweet Potato Leaf Extract (Control). Each treatment was replicated 3 times. The test  parameters  observed  were  blood  glucose,  glycogen  levels,  and  survival  rates  (SR).  The  results  showed  that  the administration  of  sweet  potato  leaf  extract  with  different  doses  gave  significantly  different  effects  on  blood  glucose  levels  of jelawat fish fry. The highest  blood glucose levels were in  treatment D  (76.00 mg/dL), followed by treatment A (34.33 mg/dL), then  treatment  C  (33.33  mg/dL),  and  treatment  B  (32.50  mg/dL).  ).  For  glycogen  levels  at  the  beginning  (0th  hour)  of  130 mg/100mL, and increased at 8th hour (end) to 175 mg/100mL for treatment A, 155.21 mg/100mL for Treatment B, 188.34 mg/ 100mL  for  Treatment  C,  and  197.41  mg/100mL  for  Treatment  D.  The  best  survival  rate  in  this  study  was  in  treatment  B (90.33%), then treatment A (85.67%), treatment C (83.00 %) and treatment D (80.00%).
Keywords: Glucose, glycogen, jelawat, sweet potato leaves
Abstrak. Tujuan penelitian ini untuk menentukan efektivitas ekstrak daun ubi jalar sebagai anti stress pada proses pengangkutan benih ikan jelawat ( L. hoevenii Blkr ) . Rancangan percobaan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap ( RAL ) dengan 4 perlakuan dosis ekstrak daun  ubi jalar yaitu ;  Perlakuan A  :   Ekstrak Daun Ubi Jalar  Dengan Dosis 2  mL/L  Air,  Perlakuan B: Ekstrak  Daun  Ubi  Jalar  Dengan  Dosis  4  mL/  L  Air,  Perlakuan  C  :    Ekstrak  Daun  Ubi  Jalar  Dengan  Dosis  6  mL/  L  Air,  dan Perlakuan D :  Tanpa Pemberian  Ekstrak Daun Ubi Jalar (Kontrol). Masing-masing perlakuan diberi ulangan sebanyak 3 kali. Parameter  uji  yang  diamati  berupa  glukosa  darah,  kadar  glikogen,  dan  tingkat  kelangsungan  hidup  (TKH).  Hasil  penelitian menunjukkan bahwa pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda memberikan pengaruh yang berbeda sangat nyata terhadap kadar glukosa darah benih ikan jelawat. Kadar glukosa darah teringgi terdapat pada perlakuan D (76,00 mg/dL), diikuti perlakuan A (34,33 mg/dL), kemudian perlakuan C (33,33mg/dL), dan perlakuan B (32,50 mg/dL). Untuk kadar glikogen pada awal  (Jam  ke-0)  sebesar  130  mg/100mL,  dan  meningkat  pada  jam  ke  8  (akhir)  menjadi  175  mg/100mL  untuk  perlakuan  A, 155,21  mg/100mL  untuk  Perlakuan  B,  188,34  mg/100mL  untuk  Perlakuan  C,  dan  197,41  mg/100mL  untuk  Perlakuan  D. Tingkat kelangsungan hidup terbaik pada penelitian ini terdapat pada perlakuan B (90,33%), selanjutnya perlakuan A (85,67%), perlakuan C (83,00%) dan perlakuan D (80,00%).
Kata Kunci : Glukosa, glikogen, jelawat, daun ubi jalar

## PENDAHULUAN
Ikan  jelawat  ( Leptobarbus  hoevenii. Blkr)  merupakan  ikan  air  tawar  dari  daerah  Sumatera  dan  Kalimantan yang bernilaki ekonomis karena Permintaan pasar yang cukup tinggi baik itu pasar lokal maupun manca negara. Saat ini benih ikan jelawat sudah dapat diproduksi secara masal melalui metode pemijahan buatan. Pada transportasi ikan jelawat, kendala yang sering dihadapi adalah mortalitas benih yang tinggi akibat stress.  Permasalahan yang muncul selama  berlangsungnya  proses  transportasi  benih    adalah  terjadinya  stress  pada  benih  yang  nantinya  berdampak terhadap  tingkat  kelangsungan  hidup  pasca  transportasi  (Syafarani, et.al 2020).    Lebih  lanjut  menurut  Lili et  al, (2019)  transportasi  ikan  hidup  dapat  meyebabkan  stres  dan  mempengaruhi  kondisi  fisiologis.  Stres  terjadi  akibat adanya  perubahan  fisiologis  dalam  tubuh  ikan  yang  disebabkan  oleh  tingginya  tingkat  metabolisme  dan  aktivitas ikan,  sehingga  kandungan  oksigen  terlarut  cenderung  menurun  cepat  dan  oksigen  dari  lingkungan  tidak  bisa memenuhi kebutuhan ikan (Ismi, 2017).
Menurut  Midihatama, et  al (2017)  upaya  yang  dapat  ditempuh  adalah  dengan  pemberian  anestesi menggunakan  bahan  antimetabolit.  Daun  ubi  jalar  mengandung  bahan  antimetabolit  berupa  senyawa saponin, flavonoid, dan polifenol yang  berpotensi  digunakan  untuk  mengatasi  stress  ikan  saat  transportasi.  Hasil  penelitian Anggraini et al (2016) menunjukkan bahwa pemberian air perasan daun ubi jalar yang berbeda pada pengangkutan ikan Mas ( Cyprinus carpio L.) dalam waktu 8 jam  memberikan pengaruh yang nyata terhadap kelulushidupan dan tingkah  laku  ikan  mas.  Rizky et  al (2020)  menyatakan  bahwa  ekstrak  daun  ubi  jalar  mampu  menekan  stres  ikan jelawat  karena  mengandung  senyawa  tanin  sebagai  antioksidan  yang  dapat  menghambat  radikal  bebas  sehingga dapat mengurangi resistensi insulin dan menurunkan kadar glukosa darah.
Sudirman, Muhammad  Sugihartono, dan  M. Yusuf  Arifin. Respons Stres Benih Ikan Jelawat  (Leptobarbus hoevenii  Blkr) Yang di Beri Ekstrak Daun Ubi Jalar Pada Proses Transportasi

## METODE PENELITIAN
Rancangan  percobaan  yang  digunakan  adalah  Rancangan  Acak  Lengkap  (  RAL  )  dengan  4  perlakuan  dosis ekstrak  daun  ubi  jalar  yaitu  ;  Perlakuan  A  :    Ekstrak  Daun  Ubi  Jalar  Dengan  Dosis  2  mL/L  Air,  Perlakuan  B  : Ekstrak Daun Ubi Jalar Dengan Dosis 4 mL/ L Air, Perlakuan C :  Ekstrak Daun Ubi Jalar Dengan Dosis 6 mL/ L Air,  dan  Perlakuan  D  :    Tanpa  Pemberian  Ekstrak  Daun  Ubi  Jalar  (Kontrol).  Masing-masing  perlakuan  diberi ulangan sebanyak 3 kali.

## Prosedur penelitian Persiapan ikan uji
Benih  ikan  jelawat  yang  di  gunakan  pada  penelitian  ini  adalah  benih  yang  di  dapat  dari  hasil  pemijahan buatan  di  Instalasi  Ikan  Hias  Telanaipura  Dinas  Kelautan  dan  Perikanan  Provinsi  Jambi.  Benih  yang  digunakan berjumlah 100 ekor/Wadah dengan ukuran rata-rata  2  inchi.
Sebelum proses transportasi berlangsung ikan uji terlebih dahulu dipuasakan selama 1 hari, tujuannya untuk mengurangi beban amoniak yang berasal dari feses dan urine ikan.

## Persiapan ekstrak Daun Ubi Jalar
Pelaksanaan  awal  penelitian  adalah  dengan  menyiapkan  ekstrak    daun  ubi  jalar.  Daun  ubi  jalar  yang  akan dijadikan ekstrak sebelumnya dicuci bersih dan ditimbang sebanyak 500 gram. Selanjutnya daun ubi jalar diblender dengan  penambahan  air  sebanyak  500  mL  atau  dengan  perbandingan  1  :  1.  Daun  ubi  jalar  yang  sudah  diblender selanjutnya  disaring  menggunakan  kertas  saring  dengan  ukuran  mesh  0,45  µm.  Ekstrak  daun  ubi  jalar  selanjutnya dimasukkan kedalam botol yang ditutup rapat dan disimpan didalam lemari pendingin dan siap untuk digunakan

## Pelaksanaan penelitian
Tahap  awal  penelitian  ini  adalah  dengan  meyiapkan  wadah  plastik  dan  mengisinya  dengan  air,  wadah kantong  plastik  yang  dipakai  adalah  40  x  60  cm di  isi  air  dengan  volume  5  liter/kantong.    Tahapan  selanjutnya adalah dengan memasukan ikan uji ke dalam setiap wadah plastik sesuai dengan perlakuan. Pemberian ekstrak daun ubi jalar  dilakukan  dengan  memasukkan  ekstrak    kedalam  kantong  plastik  yang  telah  berisi  air dan ikan  uji  sesuai dosis perlakuan.
Untuk selanjutnya udara yang berada di wadah plastik dikeluarkan dengan cara menekan wadah ke permukaan air lalu setelah udara dikeluarkan, tahap selanjutnya adalah menambahkan oksigen dengan tabung oksigen ke dalam wadah  plastik.  kemudian  wadah  plastik  yang  sudah  berisi  ikan  diletakkan  disusun  sesuai  dengan  susunan pengacakan.

## Parameter yang Diamati

## A. Glukosa darah
Pengujian kadar glukosa darah ikan dilakukan sesuai dengan metode yang dilakukan oleh Midihatama et al (2018)  yaitu  pengukuran  menggunakan  alat  pengukur  kadar  glukosa  darah  digital  dengan  cara  memasukan  kertas strip  ke  dalam  alat  digital,  ditunggu  hingga  alat  memunculkan  angka  gambaran  darah.  Pengambilan  darah  melalui vena kaudal yang berada di pangkal ekor ikan. Pengecekan Glukosa darah ikan uji dilakukan dengan alat Glukosa test kit.
Pengujian kadar glukosa darah ikan dilakukan sesuai dengan metode yang dilakukan oleh Midihatama et al (2018)  yaitu  pengukuran  menggunakan  alat  pengukur  kadar  glukosa  darah  digital  dengan  cara  memasukan  kertas strip  ke  dalam  alat  digital,  ditunggu  hingga  alat  memunculkan  angka  gambaran  darah.  Pengambilan  darah  melalui vena kaudal yang berada di pangkal ekor ikan. Pengecekan Glukosa darah ikan uji dilakukan dengan alat Glukosa test kit.
Pengukuran kadar glukosa darah dilakukan pada awal penelitian (jam  ke-0) yaitu sebelum ikan di packing, kemudian pada akhir penelitian (jam ke-8) yaitu setelah proses transportasi selesai.

## B. Kadar  Glikogen
Pengukuran  kadar  glikogen  dilakukan  di  Laboratorium,  sampel  yang  akan  dianalisis  adalah  ikan  uji  dari setiap  perlakuan  yang  sebelumnya  dihancurkan/digerus  terlebih  dahulu.  Sampel  diambil  pada  awal  penelitian  (jam ke-0) yaitu sebelum ikan di packing dan pada akhir penelitian (jam ke-8) yaitu setelah proses transportasi selesai.

## C. Tingkat Kelangsungan Hidup  (TKH)
Setelah penelitian selesai dilakukan penghitungan kelangsungan hidup larva dengan rumus :

## TKH X 100 %
Keterangan :      TKH   = Tingkat Kelangsungan Hidup
Nt = Jumlah ikan yang hidup pada akhir penelitian (ekor) N 0 = Jumlah ikan yang hidup pada awal penelitian (ekor)

## D. Parameter Kualitas Air
Parameter  kualitas  air  yang  diamati  dalam  penelitian  ini  berupa  suhu,  pH,  DO.  CO2  dan  Amoniak. Pengukuran dilakukan pada saat awal dan akhir penelitian.

## Analisis Data
Untuk  melihat  pengaruh  perlakuan  air  perasan  daun  ubi  jalar  terhadap  tingkat  stres  pada  ikan  jelawat  ( L. hoevenii  Blkr )  maka  analisis  dengan  sidik  ragam  anova,  dan  untuk  mengetahui  perbandingan  pengaruh  perlakuan terhadap tingkat stres ikan dilakukan menggunakan uji BNJ pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Respon Glukosa Darah
Transportasi benih ikan jelawat yang dilakukan berlangsung selama 8 jam, dan diperoleh data kadar glukosa darah (Gambar 1) yang diukur pada jam ke 0 (awal) dan jam ke 8 (akhir).
Gambar 1. Kadar  Glukosa  Darah  benih  ikan  jelawat  yang  ditransportasi  dengan  perlakuan  pemberian  air  perasan daun ubi jalar dengan dosis berbeda
Data pada grafik (Gambar 1) menunjukkan bahwa kadar glukosa darah benih ikan jelawat untuk perlakuan A pada jam ke 0 sebesar 27 mg/dL, dan meningkat pada jam ke 8 menjadi 34,33 mg/dL. Kadar glukosa darah untuk perlakuan B pada jam ke 0 sebesar 27 mg/dL, meningkat pada jam ke 8 menjadi 32,50 mg/dL. Perlakuan C  glukosa darah pada jam ke 0 sebesar 27 mg/dL, meningkat pada jam ke 8 menjadi 33,33 mg/dL.Sedangkan untuk perlakuan D  glukosa darah pada jam ke 0 sebesar 27 mg/dL, dan pada jam ke 8 meningkat menjadi 76 mg/dL.
Tabel 1. Analisis  sidik  ragam  pada  taraf  5%  terhadap  kadar  glukosa  darah  benih  ikan  jelawat  yang  ditransportasi dengan perlakuan pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda
Perlakuan Kadar glukosa darah (mg/dL) Notasi A 34,33 a B 32,50 b C 33,33 b D 76,00 c
Keterangan : huruf kecil yang tidak sama pada kolom notasi menyatakan berbeda nyata
Hasil analisis sidik ragam pada taraf 5% (Tabel 1) menunjukkan bahwa perlakuan pemberian air perasan daun ubi jalar dengan dosis berbeda memberikan pengaruh yang berbeda sangat nyata terhadap kadar glukosa darah benih ikan  jelawat.  Untuk  perlakuan  B  dan  C  menunjukkan  perbedaan  tidak  nyata,  sedangkan  kedua  Perlakuan  tersebut berbeda nyata dengan Perlakuan A dan berbeda sangat nyata terhadap Perlakuan D.
Kadar glukosa darah benih ikan jelawat pada perlakuan  B dan C cenderung stabil yaitu berkisar antara 32,50 – 33 mg/dL, sedangkan perlakuan D meningkat hingga 76,00 mg/dL. Kondisi tersebut menunjukkan bahwa benih ikan jelawat pada perlakuan yang diberi ekstrak daun ubi jalar cenderung tidak mengalami stress, sedangkan kadar
Sudirman, Muhammad  Sugihartono, dan  M. Yusuf  Arifin. Respons Stres Benih Ikan Jelawat  (Leptobarbus hoevenii  Blkr) Yang di Beri Ekstrak Daun Ubi Jalar Pada Proses Transportasi
glukosa  darah  yang  meningkat  pada  perlakuan  D  dapat  diartikan  bahwa  benih  ikan  jelawat  mengalami  stress. Menurut  Nasichah et  al (2016)  bahwa  pada  keadaan  stres  terjadi  peningkatan  glukokortikoid  yang  berakibat  pada peningkatan kadar glukosa darah untuk mengatasi kebutuhan energi yang tinggi pada saat stres.
Kadar glukosa darah ikan pada perlakuan A, B, dan C yang cenderung lebih rendah dan stabil dibandingkan dengan  perlakuan  D,  hal  tersebut  diduga  terjadi  karena  adanya  peranan  daun  ubi  jalar  yang  mengandung  senyawa aktif  seperti  saponin,  flavonoid,  dan  polifenol  yang  berfungsi  untuk  mencegah  stress  pada  ikan  saat  dilakukan transportasi.  Suarez et  al ,  (2020)  yang  menyatakan  bahwa  daun  ubi  jalar  mengandung  zat  kimia  berupa  saponin, flavonoid,  dan  polifenol  yang  merupakan  zat  penting  sebagai  antioksidan  serta  bermanfaat  sebagai  pencegah  stres ikan  selama  proses  pengangkutan.  Rizky et  al (2020)  menyatakan  bahwa  ekstrak  daun  ubi  jalar  mampu  menekan stres  ikan  jelawat  karena  mengandung  senyawa  tanin  sebagai  antioksidan  yang  dapat  menghambat  radikal  bebas sehingga dapat mengurangi resistensi insulin dan menurunkan kadar glukosa darah. Selanjutnya menurut Anggraini et  al, (2016)  Adanya  kandungan  bahan  kimia  berupa  saponin,  alkaloid  dan  flavonoid  pada  dau  ubi  jalar  dapat menurunkan tingkat stres ikan pada saat pengangkutan.

## Kadar Glikogen
Data  kadar  glikogen  benih  ikan  jelawat  yang  ditransportasi  dengan  perlakuan  pemberian  ekstrak  daun  ubi jalar dengan dosis berbeda disajikan dalam bentuk grafik pada Gambar 2.
Gambar 2. Rata-rata  Kadar  glikogen  benih  ikan  jelawat  yang  ditransportasi  dengan  perlakuan  pemberian  ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda
Data pada Gambar 2 menunjukkan bahwa terjadi peningkatan kadar glikogen pada semua perlakuan, yaitu pada awal (Jam ke-0) sebesar 130 mg/100mL, dan meningkat pada jam ke 8 (akhir) menjadi 175 mg/100mL untuk perlakuan A, 155,21 mg/100mL untuk Perlakuan B, 188,34 mg/100mL untuk Perlakuan C, dan 197,41 mg/100mL untuk Perlakuan D.
Peningkatan  kadar  glikogen  yang  terjadi  pada  semua  Perlakuan  menunjukkan  bahwa  benih  ikan  jelawat mengalami  stress,  namun  demikian  kadar  glikogen  kadar  glikogen  untuk  perlakuan  A,  B  dan  C  cenderung  lebih rendah dari Perlakuan D. Kondisi tersebut menunjukkan bahwa benih ikan jelawat pada Perlakuan D membutuhkan lebih banyak glikogen yang akan digunakan untuk memenuhi kebutuhan energi guna mengatasi stress. Peningkatan glikogen terjadi akibat tingginya nilai glukosa darah yang disimpan dalam proses glikogenesis. Saat kondisi normal glukosa tersimpan didalam hati dan daging dalam bentuk glikogen. Jika terjadi kekurangan glukosa yang digunakan pada  saat  ikan  stress,  maka  glikogen  yang  merupakan  cadangan  energi  siap  pakai  akan  dipecah  kembali  menjadi glukosa.
Menurut  Handayani  (2011)  peningkatan  kadar  glikogen  merupakan  indikator  adanya  penggunaan  glukosa darah  guna  memenuhi  kebutuhan  energi  untuk  metabolisme  terutama  pada  kondisi  stress.  Lebih  lanjut  menurut Xavier et.al. (2021)  rendahnya  kadar  glikogen  pada  hati  dan  daging  terjadi  karena  glukosa  masih  dianggap mencukupi kebutuhan energi untuk metabolisme, sehingga glikogen tidak perlu dipecah menjadi glukosa.

## Tingkat Kelangsungan Hidup (TKH)
Stress  yang  terjadi  pada  ikan  saat  transportasi  akan  berdampak  terhadap  tingkat  kelangsungan  hidup  atau survival  rate  baik  itu  pada  saat  berlangsungnya  proses  pengangkutan,  saat  pembongkaran,  maupun  beberapa  hari pasca pengangkutan.
Sudirman, Muhammad  Sugihartono, dan  M. Yusuf  Arifin. Respons Stres Benih Ikan Jelawat  (Leptobarbus hoevenii  Blkr) Yang di Beri Ekstrak Daun Ubi Jalar Pada Proses Transportasi
Data tingkat kelangsungan hidup benih ikan jelawat yang ditransportasi dengan perlakuan pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda disajikan dalam bentuk grafik pada Gambar 3.
Gambar 3. Grafik tingkat kelangsungan hidup benih ikan jelawat yang ditransportasi dengan perlakuan pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda
Data  pada  Grafik  (Gambar  3)  menunjukkan  bahwa  tingkat  kelangsungan  hidup  benih  ikan  jelawat  yang ditransportasi dengan perlakuan pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda berkisar antara 80 – 90,33%.
Tabel 2. Analisis  sidik  ragam  pada  taraf  5%  terhadap  kelangsungan  hidup/survival  rate  benih  ikan  jelawat  yang ditransportasi dengan perlakuan pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda
Perlakuan TKH (%) Notasi A 85,67 a B 90,33 a C 83,00 ab D 80,00 b
Keterrangan : huruf kecil yang tidak sama pada kolom notasi menyatakan berbeda nyata
Hasil  analisis  sidik  ragam  pada  taraf  5%  (Tabel  2)  menunjukkan  bahwa  pemberian  ekstrak  daun  ubi  jalar dengan  dosis  berbeda  memberikan  pengaruh  yang  berbeda  nyata  terhadap  tingkat  kelangsungan  hidup  benih  ikan jelawat.  Perlakuan  A,  dan  B  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  D,  namun  berbeda  tidak  nyata  dengan  Perlakuan  C. Tingkat  kelangsungan  hidup  pada perlakuan  A,  B  dan  C  yang  cenderung  lebih baik  dari  pada  perlakuan  D diduga terjadi karena adanya pengaruh pemberian daun ubi jalar. Senyawa aktif pada daun ubi jalar mampu menekan stress pada  saat  ikan  ditransportasi.  Menurut  Anggraini et  al, (2016)  penggunaan  perasan  daun  ubi  jalar  dapat mempengaruhi angka kelulus hidupan dan tingkah laku ikan selama pengangkutan.
Berbeda  dengan  perlakuan  D  yang  tidak  diberi  ekstrak  daun  ubi  jalar,  benih  ikan  jelawat  mengalami  stress sejak  perlakuan  packing  hingga  proses  pembongkaran.  Stress  akan  mempengaruhi  kondisi  fisiologis  dan metabolisme  didalam  tubuh  ikan  yang  selanjutnya  berdampak  pada  kelangsungan  hidup  ikan  pasca  transportasi. Menurut  Lili et  al, (2019)  transportasi  ikan  hidup  dapat  meyebabkan  stres  dan  mempengaruhi  kondisi  fisiologis. Pendapat yang sama juga dinyatakan oleh Farida et al , (2015), Stres terjadi akibat adanya perubahan fisiologis dalam tubuh ikan yang disebabkan oleh tingginya tingkat metabolisme dan aktivitas ikan.
Stres  umumnya  berada  dalam  tiga  fase  yaitu  reaksi  permulaan  ( alaram  reaction ),  yaitu  ketika  ikan  mulai dipindahkan  kedalam  wadah  pengangkutan.  Selanjutnya  masa  bertahan  ( stage  of  resistance ),  yaitu  suatu  keadaan saat  ikan  berusaha  menyesuaikan  diri  untuk  tetap  mempertahankan  keseimbangan  fisiologis  ( homeostasi ) di  dalam keadaan lingkungan yang berubah. Masa ini berlangsung hingga proses transportasi selesai.  Fase selanjutnya yaitu masa  kehabisan  daya  ( exhaustion ),  ikan  yang  berusaha  untuk  mempertahankan  keseimbangan  fisiologisnya  akan kembali  terpapar  stress  pada  saat  dilakukan  pembongkaran  serta  penyesuaian  dilingkungan  yang  baru.  Kondisi  ini akan menghentikan suatu usaha-usaha adaptasi ikan yang berdampak terhadap tidak tercapainya homeostasis.

## Kualitas Air
Parameter kualitas air yang diukur selama berlangsungnya transportasi berupa suhu, pH, DO, dan NH 3 . Data kualitas air ditampilkan pada Tabel 3.
Sudirman, Muhammad  Sugihartono, dan  M. Yusuf  Arifin. Respons Stres Benih Ikan Jelawat  (Leptobarbus hoevenii  Blkr) Yang di Beri Ekstrak Daun Ubi Jalar Pada Proses Transportasi
Tabel 3. Parameter Kualitas Air media transportasi benih ikan jelawat dengan perlakuan pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda
Waktu Perlakuan Parameter Suhu (°C) pH DO (mg/L) NH3 (mg/L) CO 2 (mg/L) Awal A 26 8 5,9 0,0011 8,5 B 26 8 6 0,0012 8,5 C 26 8 6 0,0012 8,5 D 26 7 6,1 0,0012 8,5 Akhir (Jam ke 8) A 28 7 5,0 0,0015 14,5 B 28 7 5,1 0,0014 13,5 C 28 7 5,0 0,0017 15 D 29 6,6 4,6 0,0019 17,5
Data pada Tabel 3 menunjukkan bahwa suhu air selama berlangsungnya transporatsi benih ikan jelawat yaitu 26°C  pada jam  ke  0  (awal),  dan  pada jam  ke  8  berkisar antara    28  -  29°C.  Sedangkan  pH  berkisar  antara 6,6  –  8. Untuk nilai DO berkisar antara 4,6 – 6,1 mg/L, dan nilai NH3 berkisar antara 0,0011 – 0,0019 mg/L. Nilai CO2 pada awal yaitu sebesar 8,5 mg/L dan meningkat pada jam ke-8 yaitu berkisar antara 13,5 – 17,5 mg/L.
Perubahan suhu lebih cepat terjadi pada perlakuan D yaitu mencapai 29°C, sementara untuk perlakuan A, B, dan C peningkatan suhu air cenderung lebih lambat. Menurut Sebastian et al (2021) menyatakan bahwa peningkatan suhu yang cepat akan menginduksi respons stress akut pada ikan.
Berdasarkan  data  pada  terlihat  bahwa  terjadi  perubahan  atau penurunan  kualitas  air,  terutama  parameter  DO dan  NH3.  Nilai  DO  cenderung  terus  menurun  pada  setiap  perlakuan,  namun  penurunan  yang  cukup  drastis  terjadi pada perlakuan D yaitu dari 6,1 mg/L menjadi 4,6 mg/L. Idealnya kandungan oksigen terlarut agar ikan jelawat dapat hidup dengan baik adalah 5-7 ppm (Riyoma, et.al . 2020).
Penurunan nilai DO terjadi akibat adanya proses pernafasan ikan dan metabolisme yang cepat terutama ketika stress.  Stres  terjadi  akibat  adanya  perubahan  fisiologis  dalam  tubuh  ikan  yang  disebabkan  oleh  tingginya  tingkat metabolisme  dan  aktivitas  ikan,  sehingga  kandungan  oksigen  terlarut  cenderung  menurun  cepat  dalam  media pengangkutan (Farida et al , 2015). Laju metabolisme yang cenderung terjadi lebih cepat akan mempercepat proses pembuangan urine dan feses. Hal ini akan berdampak terhadap cepatnya peningkatan NH 3 didalam air, terlebih lagi ketika  terjadinya  peningkatan  suhu,  penurunan  pH  dan  DO.  Kondisi  tersebut  terjadi  pada  perlakuan  D,  yaitu  nilai NH 3 meningkat  pada  jam  ke  8  hingga  mencapai  0,0019  mg/L.  Menurut  Farida et.al (2015)  Kadar  amonia  akan berubah  seiring  dengan  perubahan  oksigen  terlarut,  suhu,  dan  pH.  Hal  ini  juga  sesuai  dengan  pernyataan  Effendi (2003),  bahwa  karbondioksida  terlarut,  oksigen  terlarut,  suhu,  dan  pH  dapat  merubah  daya  racun  amonia  dalam perairan.

## KESIMPULAN
Berdasarkan data yang diperoleh setelah berlangsungnya penelitian dan analisis data, maka dapat disimpulkan bahwa :
Pemberian ekstrak daun ubi jalar dengan dosis berbeda memberikan pengaruh berbeda nyata pada taraf 5%, respons glukosa darah, kadar glikogen dan kelangsungan hidup benih ikan jelawat pada perlakuan yang diberi ekstrak daun ubi jalar cenderung lebih baik dibanding perlakuan yang tidak di beri ekstrak daun ubi jalar.

## DAFTAR PUSTAKA
Anggraini. D., Kasmaruddin., Maskur. 2016. Pengaruh pemberian daun ubi jalar dengan dosis yang berbeda terhadap kelulusan  hidup  benih  ikan  mas  (Cyprinus  Carpio  L.)  dalam  pengangkutan.  Prodi  Budidaya  Perairan Universitas Islam Indragiri. ISSN :2442-7845. Vol 2. No 3. Hal 194-199.
Ayeleso,  T.B.,  K.  Ramachela.,  E.  Mukwevho.  2018.  Aqueous-Methanol  Extracts  of  Orange-Fleshed  Sweet  Potato (Ipomoea  batatas)  Ameliorate  Oxidative  Stress  and  Modulate  Type  2  Diabetes  Associated  Genes  in  Insulin Resistant C2C12 Cells. Journal molecules. doi:10.3390/molecules23082058
Bakrie.  R.Y.,  Olgani.  S.  2020.  Daya  Tahan  Hidup  Benih  Ikan  Nila  ( Oreochromis  Niloticus )  Dalam  Pengangkutan Menggunakan Galon Air. ZIRAA’AH, p-ISSN 1412-1468 e-ISSN 2355-3545. Volume 45 Nomor 3, Oktober 2020 Cahyadi, R., Suharman, I., Adelina. 2015. Utilization of Fermented Water Hyacinth (Eichhornia crassipes) Meal in The  Diets  on  Growth  of  Jelawat  (Leptobarbus  hoeveni). Jurnal  Online  Mahasiswa  (JOM)  Bidang  Perikanan dan Ilmu Kelautan, 2(2), 1-10
Sudirman, Muhammad  Sugihartono, dan  M. Yusuf  Arifin. Respons Stres Benih Ikan Jelawat  (Leptobarbus hoevenii  Blkr) Yang di Beri Ekstrak Daun Ubi Jalar Pada Proses Transportasi
Djauhari.  R.,  Matling.,  MonalisA.S.S.,  Sianturi.  (2019).  Respon  Glukosa  Darah  Ikan  Betok  ( Anabas  testudineus ) Terhadap Stres Padat Tebar. Jurnal Ilmu Hewani Tropika Vol 8. No.2.Desember 2019. ISSN : 2301-7783. Effendi. H.  2003. Telaah Kualitas Air. Bagi Pengolaan Sumberdaya Dan Lingkungan. Kanisius. Yogyakarta Ernawati dan Dewi (2016). Kajian Kesesuaian Kualitas Air Untuk Pengembangan Keramba Jaring Apung Di Pulau Serangan, Bali. Jurnal Ecotrophic, Volume 10 Nomor 1 Tahun 2016 Issn : 1907-5626 Farida.,  Rachini.,  J.  Ramadhan.  2015.  Imotilisasi  Benih  Ikan  Jelawat  ( Leptobarbus  Hoevani )  Menggunakan Konsentrasi  Larutan  Daun  Bandotan  ( Ageratum  Conyzoides )  Yang  Berbeda  Pada  Transportasi  Tertutup. Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan,  Universitas  Muhammadiyah  Pontianak.  Jurnal  Ruaya  Vol.5.  ISSN 2541 – 3155.
Fauzi.A.R.,  H.  Hasan.,  E.  Praseti.  2019.  Uji  Efektivitas  Ekstrak  Etanol  Daun  Kembang  sepatu  ( Hibiscus  rosa sinensis L.)  Sebagai  immunostimulan  Ikan  Jelawat  ( Leptobarbus  hoevenii  blkr .)  Yang  Diinfeksi  Dengan Bakteri Aeromonas Hydrophila. Jurnal Ruaya Vol. 7. No .1. Th 2019. ISSN 2541 –3155 Firmansyah.W.,  Cokrowati.w.,  Scabra.  A.R.  2021.  Pengaruh  Luas  Penampang  Sistem  Resirkulasi  yang  Berbeda terhadap  Kualitas  Air pada  Pemeliharaan  Ikan  Nila ( Oreochromis  niloticus ). Jurnal  Perikanan  Dan Kelautan Volume 26 No. 2, Juni 2021: 85-93
Hambali. M., Mayasari. F., Noermansyah. F. 2014. Ekstraksi Antosianin Dari Ubi Jalar Dengan Variasi Konsentrasi Solven, Dan Lama Waktu Ekstraksi. Jurnal Teknik Kimia No. 2, Vol. 20, April 2014.
Handayani, S. 2011. Uji Toleransi Glukosa dan Uji Toleransi Insulin Glukosa Pada Ikan Gurame yang diberi Pakan Mengandung Kadar Protein dan Karbohidrat yang Berbeda. Institut Pertanian Bogor. Bogor Hastuti. S., E. Supriyono., I. Mokoginta., Subandiyono (2003). Respon Glukosa Darah Ikan Gurami (Osphronemus Gouramy,  Lac.)  Terhadap  Stres  Perubahan  Suhu  Lingkungan.  Jurnal  Akuakultur  Indonesia,  2(2):  73-77 (2003).
Ismi. S. 2017. Pengaruh Penggantian Oksigen Pada Transportasi Benih Kerapu Dengan Sistem Tertutup. Jurnal Ilmu dan Teknologi Kelautan Tropis, Vol. 9, No. 1, Hlm. 385-391, Juni 2017.
Jamaliah, Prasetiyono.E., Syaputra.D., (2019). Kelulushidupan Benih Ikan Nila ( Oreochromis Niloticus ) Pada Proses Transportasi Sistem Tertutup Dengan Penambahan Perasan Daun Ubi Kayu Aksesi Batin ( Manihotes culenta Crantz ). Media Akuakultur, 15 (1), 2020, 15-22
Lili.  W.,  N.  Rubiansyah.,  Z.  Anna.,  K.  Haetami.  2019.  Effect  of  Using  Low  Temperature  in  the  Beginning  of Transportation with Closed System of Goldfish juvenile ( Carassius auratus L .).  World Scientific News 133 (2019) 45 – 55. EISSN 2392-2192.
Maraja,  Salindeho.N.,  Pongoh.J.,  Penanganan  Ikan  Nila  ( Oreochromis  Niloticus )  Hidup  Dengan  Menggunakan  Es Sebagai Pengawet. Jurnal Media Teknologi Hasil Perikanan Vol. 5, No. 3, November 2017 Midihatama,  Subandiyono,  Haditomo.A.H.C  (2018).  Pengaruh  Eugenol  Terhadap  Kadar  Glukosa  Darah  Dan Kelulushidupan Benih Ikan Gurami ( Osphronemus Gouramy, Lac.) Selama Dan Setelah Periode Transportasi Sistem Tertutup. Jurnal Sains Akuakultur Tropis: 2(2018)2:12-17 e-ISSN: 2621-0525 Nasichah. Z., P. Widjanarko., A. Kurniawan., D. Arfiati. 2016. analisis kadar glukosa darah ikan tawes ( Barbonymus Gonionotus ) dari bendung rolak songo hilir sungaibrantas. Jurnal ilmiah Universitas Trunojoyo Madura. Hal. 328-333.
Ridwantara,  R.,  I.  D.  Buono.,  A.  A.  Ha0ndaka.,  W.  Lili.,  I.  Bangkit.  2019.  Uji  Kelangsungan  Hidup  Dan Pertumbuhan Benih Ikan Mas Mantap ( Cyprinus Carpio ) Pada Rentang Suhu Yang Berbeda. Jurnal Perikanan dan Kelautan. Universitas Padjajaran. Vol. X No. 1 /Juni 2019 (46-54).
Riyoma.  A.,  R.  Diantari.,  A.A.  Damai.  2020.  Analisis  Kesesuaian  Perairan  Untuk  Budidaya  Ikan  Jelawat Leptobarbus  hoevenii (Bleeker,  1851)  Di  Danau  Way  Jepara,  Kecamatan  Way  Jepara  Kabupaten  Lampung Timur. Jurnal Sains Teknologi Akuakultur (2020) 3(1): 19-32 ISSN 2599-1701 Rizky. N., M. Sugihartono., M. Ghofur. (2020). Respons Glukosa Darah Benih Ikan Jelawat ( Leptobarbus Hoeveni Blkr)  Dalam  Media  Yang  DiberiEkstrak  Daun  Ubi  Jalar  ( Ipomoea  batatas ).  Jurnal  Akuakultur  Sungai  dan Danau,  5(2)  Oktober2020,  pp.50-54.  ISSN  2503-4766(Print)  |  ISSN  2597-8837(Online)  |  DOI 10.33087/akuakultur.v5i2.68
Saanin. H. 1968. Taksonomi dan Kunci Identifikasi Ikan Jilid I dan II. Bogor.
Sebastien,  A., Manuel.  G.,  Bastien,  S (2021). Temperature  increase  and  its effects  on fish  stress  physiology  in  the context of global warming. Journal of Fish Biology. June 2021, Volume 98, Issue 6, Pages 1496-1508 Steel  R.G.D  and  J.H.  Torrie.  1992. Prinsip  dan  Prosedur  Statistika  Suatu  Pendekatan  Biometrik. PT.  Gramedia Pustaka Utama. Jakarta Suarez. S., T. Mu., H. Sun., M.C. Anon. 2020. Antioxidant activity, nutritional, and phenolic composition of sweet potato leaves as affected by harvesting period. International Journal Of Food Properties 2020, Vol. 23, No. 1, 178–188.
Sudirman, Muhammad  Sugihartono, dan  M. Yusuf  Arifin. Respons Stres Benih Ikan Jelawat  (Leptobarbus hoevenii  Blkr) Yang di Beri Ekstrak Daun Ubi Jalar Pada Proses Transportasi
Syafarani.  A.,  Raharjo.  E.I.,  Lestari.T.P.,(2020).  Transportasi  Benih  Ikan  Jelawat  ( Leptobarbus  Hoeveni ) Menggunakan Sistem Kering Dengan Ketebalan Media Ampas Tebu Yang Berbeda. Jurnal Borneo Akuatika. Vol. 2. No.2 (2020).
Xavier B, Megarajan S, Ranjan R, Dash B, Sadhu N, Siva P, Ghosh S, 2021. Growth And Metabolic Responses Of Orange  Spotted  Grouper  Epinephelus  Coioides  (Hamilton,  1822)  Fingerling  At  Different  Salinity  Regimes . Indian J. Fish. 68(1): 40 - 48
Zonneveld. N., E. A. Huisman., J. H. Boon. (1991). Prinsip-prinsip budidaya ikan. Gramedia Pustaka Umum. Jakarta