## INTENSITAS CAHAYA LAMPU PIJAR TERHADAP PERKEMBANGAN EMBRIOGENESIS DAN KELANGSUNGAN HIDUP LARVA
KERANG MUTIARA ( Pinctada maxima )

## FLUORESCENT LAMP LIGHT INTENSITY ON THE EMBRYOGENESIS DEVELOPMENT AND THE SURVIVAL OF
PEARL OYSTER ( Pinctada maxima ) LARVAE
Mat Sardi Hamzah UPT. Loka Pengembangan Bio Industsi Laut Mataram, P2O-LIPI, NTB E-mail: mats.cancuhou@yahoo.co.id

## ABSTRACT
One  of  the  important  factors  in  determining  the  success  of  pearl  oyster (Pinctada  maxima) culture  is the  quality and quantity  of larvae produced  in  brood stock spawning  process  in the laboratory. Problems were often found in larval rearing and larvae attachment to the substrate that  were  low  in  quality  and  little  number  of  larvae.  The  study  purposes  were  observe  the embryogenesis  development  and  the  survival  rate  of  pearl  oyster  larvae  under  different fluorescent  lamp  light  intensities.  The  study  was  conducted  in  August  1 nd –  30 th ,  2011  in Sambelia  Bumi  Gemilang  Hamparan  Mutiara  laboratory,  East  Lombok.  Results  revealed  that different  in  light  intensities  effected  the  survivorship  of  the  pearl  oyster  larvae  significantly (p<0.01).  Honest  Significant  Difference  (HSD)  test  indicated  that  the  highest  survival  rate occurred in dark condition (dark treatment) of 38%, followed by intensity of 10 watts (34.67%), 5 watts (30.67%) and 15 watts (4.66%) resfectively
Keywords : embryogenesis development, survivorship, pearl oyster (Pinctada maxima ) larvae , fluorescent lamp light intensity

## ABSTRAK
Salah  satu  faktor  penting  yang  menentukan  keberhasilan  usaha  budidaya  kerang  mutiara ( Pinctada  maxima )  adalah  kualitas  dan  jumlah  larva  yang  dihasilkan  dari  proses  pemijahan induk kerang di laboratorium.  Kendala yang sering ditemukan dalam proses pembesaran larva hingga penempelan pada kolektor adalah kualitas dan jumlah larva yang masih rendah. Tujuan penelitian adalah untuk mengamati perkembangan embriogenesis dan kelangsungan hidup larva kerang  mutiara  berdasakan  intensitas  cahaya  bolham  lampu  pijar  yang  berbeda.  Penelitian dilakukan  pada  tanggal  01  –  30  Agustus  2011  di  laboratorium  Bumi  Gemilang  Hamparan Mutiara  Sambelia,  Lombok  Timur.  Hasil  percobaan  memperlihatkan  bahwa  intensitas  cahaya yang  berbeda  memberikan  pengaruh  yang  sangat  nyata  terhadap  kelangsungan  hidup  larva kerang  mutiara  (p<0,01). Uji  Beda  Nyata Jujur  diperoleh  bahwa  kelangsungan  hidup  tertinggi tercatat  pada  kondisi  ruangan  yang  gelap  (perlakuan  gelap)  yaitu  mencapai  38%  dan  disusul intensitas cahaya lampu 10 watt (34,67%), 5 watt (30,67%), dan 15 watt (4,66%).
Kata kunci : perkembangan embriogensis, kelangsungan hidup larva kerang mutiara ( Pinctada maxima ),  intensitas cahaya bolham lampu pijar

## I. PENDAHULUAN
Teknologi  pengembangan  budida- ya  kerang  mutiara  pada  mulanya  dikuasai oleh  tenaga  asing  (Jepang)  khusus  untuk hatchery dan operasi penyuntikan. Namun
seiring  dengan  perkembangan  teknologi bidang kelautan, maka pada dekade tahun 1980-an  telah  terjadi  alih  teknologi. Contohnya beberapa  perusahan  budidaya kerang  mutiara  yang  ada  di  Indonesia telah  mandiri  dan  tidak  lagi  tergantung
pada teknisi Jepang seperti pada beberapa perusahaan  budidaya  kerang  mutiara dibeberapa  lokasi  di  Indonesia  (PT. Poloma  Agung  di  Sumbawa,  NTB;  PT. Disty  Kumala  Bahari  di  Buleleng,  Bali; PT.  Tiara  Indopearl  di  kepulauan  Aru, Maluku Tenggara; Pulau Banggai,
Sulawesi  Tengah  dan  Flores,  Nusa Tenggara  Timur  ASBUMI  (1996),  dan UPT.  Loka  Pengembangan  Bio  Industri Laut Mataram, Puslit. Oseanografi – LIPI, baru  sebatas  pemijahan  dan  pembesaran anakan  yang  berawal  dari  spat  kolektor Hamzah  (2008).  Dalam  proses  pemijahan dan  perawatan  larva  di  laboratorium hingga menempel pada kolektor umumnya dilakukan  pada  ruang  gelap  (tanpa cahaya)  sehingga    masih  banyak  larva yang  mati.  Hal  ini  diindikasikan  dengan larva  yang  menempel  pada  kolektor  dan dinding  bak  kadang  hasilnya  tidak memadai. Hal ini tergambar dari beberapa hasil  penelitian  yang  dilakukan  oleh Hamzah (2008) bahwa persentasi kelangsungan  hidup  larva  kerang  mutiara ( Pinctada  maxima )  yang  menempel  pada kolektor dan dinding bak adalah bervariasi antara  8,71-28,57%  dengan  nilai  rerata sebesar  15,27%  dari  jumlah  yang  ditebar sebanyak  1.400  larva.  Hasil  penelitian Hamzah  (2013)  diperoleh  persentasi kelangsungan  hidup  rerata  sebesar  4,76% dari  jumlah  yang  ditebar  sebanyak  5.000 larva.
Marzuky (2010) diperoleh persentasi  kelangsungan  hidup  larva antara 15,73-28,13% (5.330-11.000 larva) dari jumlah yang ditebar sebanyak 36.700 larva.  Fluktuasi  persentasi  kelangsungan hidup  yang  berbeda-beda  ini  adalah diduga  dipicu  oleh  selain  faktor  pakan, juga faktor kimia dan fisika. Sebagaimana penjelasan  yang  dikemukakan  oleh  Su et al . (2007) bahwa  Faktor kimia,  dan fisika dalam  hal  ini  cahaya  adalah  merupakan faktor  pembatas  terhadap  kelangsungan hidup  dan  daya    penempelan  larva  pada kolektor.  Lebih  jauh  dijelaskan  pula bahwa  tingkah  laku  larva  kerang  mutiara,
P.  martensii lebih  condong  bersifat phototaxis  negatif  dan  lebih  senang menyebar  dan  menempel  pada  daerah yang  kurang  cahaya.  Demikian  juga penjelasan  yang  sama  dikemukakan  oleh Zhao et  al .  (2003),  Alagarswami et  al .
(1983) dan Su et al . (2007).
Dari  rangkaian  di  atas,  maka dilakukan  penelitian  dengan  mengguna- kan  intensitas  cahaya  bolham  lampu  pijar bening  yang  berbeda  untuk  melihat pertumbuhan  dan  kelangsungan  hidup larva  kerang  mutiara.  Implemntasi  hasil kajian  ini  dapat  dijadikan  pengetahuan dasar  bagi  pengembang  budidaya  kerang mutiara  ( Pinctada  maxima )  dalam  upaya meningkatkan  kelangsungan  hidup  larva di laboratorium.

## II.  METODE PENELITIAN
Penelitian  dilakukan  pada  tgl  01  – 30  Agustus  2011  di  laboratorium  PT. Bumi Gemilang Hamparan Mutiara Sambelia,  Lombok  Timur.  Perusahaan  ini terfokus  pada  budidaya  kerang  mutiara ( Pinctada  maxima )  yang  memiliki  sarana laboratorium  yang  cukup  lengkap  yaitu pemijahan  induk  kerang,  kultur  pakan alami,  jalur  pemeliharaan  benih  hingga operasi penyuntikan di laut serta dilengkapi  dengan  sarana  penunjang lainnya. Wadah pengamatan berupa ember plastik  berjumlah  16  buah  dengan kapasitas muat 20 liter/ember. Dari jumlah ini  kemudian  di  bagi  menjadi  4  bagian sesuai  dengan  jumlah  ulangan  perlakuan cahaya  bolham  lampu  pijar  bening  yaitu ruang  gelap  (0  watt),  5  watt,  10  watt  dan 15  watt,  diulang  4  kali  sebagai  ulangan perlakuan.  Bolham  lampu  pijar  pada masing-masing perlakuan dipasang ditengah  penutup  ember  dan  diletakan pada ketinggian 40 cm dari permukaan air ember. Hal ini bertujuan unuk menghindari panas yang ditimbulkan oleh pancaran  sinar  lampu  pijar  yang  dapat mempengaruhi  kondisi  suhu  air  uji.
Pengukuran intensitas sinar bolham lampu pijar  pada  jarak  40cm  dari  permukaan  air uji  adalah  dipergunakan  Lux  Metter, merek  “ KRISBOW  Seri  KW06_Light meter  0_20.000Lux ”.  Besaran  ukuran intensitas cahaya lampu pijar yaitu : 1 Lux =  0,001496  watt/m 2 ,  dengan  demikian hasil  pengukuran  pada  masing-masing perlakuan  diperoleh  5  watt  =65  Lux (0,097240  watt/m 2 ),  10  watt  =  90  Lux (0,134640 watt/m 2 ) dan 15watt = 117 Lux (0,175032  watt/m 2 ).  Ruang  pengamatan seluas  3  m  x  2  m,  dilengkapi  rak  susun untuk  penempatan  ember/wadah  uji  dan dibungkus  dengan  kelambu  kain  warna hitam  yang  tembus  pandang,  sehingga sirkulasi  udara tetap lancar. Pada masing- masing  unit  perlakuan  dipasang  sekat dengan  menggunakan  papan  triplek  agar pancaran  sinar/cahaya  antar  perlakuan tidak saling mempengaruhi. Dalam ember uji  tersebut  dipasang  aerator  dengan menggunakan slang aerasi untuk mensuplai  oksigen  terlarut  pada  setiap unit perlakuan.
Seleksi  induk  kerang  mutiara yang  matang  gonad  (tingkat  kematangan gonad 70% - 90%), selanjutnya  dilakukan proses  pemijahan  pada  ruang  gelap dengan perbandingan jantan dan betina 4 : 2 yaitu jantan sebanyak 4 ekor dan betina 2  ekor,  diharapkan  agar  sel  telur  yang dikeluarkan  dapat  dibuahi  semua.  Teknik pemijahan dapat digunakan dengan menggunakan  perlakuan  sok  suhu  atau tellehormon (pelepasan sel sperma disekitar  induk  betina)  agar  terpancing dan
segera melepaskan telurnya
sebagaimana perlakuan alamiahnya. Telur yang  telah  dibuahi  segera  dilakukan penyaringan  dengan  menggunakan  net plankton  (screen  net)  dengan  ukuran  25 µm,  40  µm,  60  µm  dan  120  µm.  Telur yang  sudah  tersaring  dimasukan  dalam wadah  dengan  volume  air  10  liter  dan selanjutnya  dilakukan  perhitungan  jumlah telur  atau  larva  yang  ada  dengan menggunakan  rumus  volumetri  yaitu:
Volume  =  Jumlah  telur  yang  dihitung  x Volume  sampel  x  2  ml  x  volume  telur dalam  mangkuk.  Jadi  jumlah  telur  yang ditebar  3.000  butir  tiap  unit  perlakuan dapat  dihitung  sebagai  berikut  :  Volume telur  dalam  mangkok  40  ml,  diambil  2ml air  sampel  (rerata  telur  37,5  butir).  Untuk mempermudah  pengamatan  jumlah  telur dalam  sampel  air  2ml,  maka  masukan beberapa tetes alkohol 75% agar telur/larva  mati,  sehingga  memudahkan perhitungan.  Pengamatan  pertumbuhan cangkang  dilakukan  setiap  2  hari  dengan menggunakan  mikrometer  yang  dipasang pada lensa okuler dengan satuan milimikron (µm) yang diletakkan dibawah mikroskop. Bersamaan dengan pengukuran  pertumbuhan  juga  dilakukan pergantian  air/penyaringan  larva  untuk menghitung jumlah yang hidup. Pemberian  pakan  campuran  diberikan setiap  hari  sebanyak  kurang  lebih  10.000 se/ml yaitu pagi dan sore hari dengan jenis antara  lain Pavlova  lutheri/Monochyris lutheri , Chaetoceros sp ., Nannochloropsis sp. dan Issochrysis galbana. Pengamatan kualitas  air  dilakukan  sebelum  pergantian air  media  yaitu  suhu  menggunakan termometer  batang,  salinitas dengan refraktometer  dan  derajat  keasaman  air dengan  pH  meter.  Data  kelangsungan hidup larva dianalisis dengan
menggunakan Anova dan Uji  Beda  Nyata Jujur  (BNJ)  bila  perlakuan  memberikan respons yang berpengaruh nyata (Sudjana, 1991).

## III.  HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1. Perkembangan Embriogensis Larva Kerang Mutiara
Hasil pengamatan fase perkembangan embriogenesis larva kerang mutiara ( Pinctada    maxima )    selama    periode pengamatan  disajikan  pada Tabel 1. Pada Tabel 1, terlihat bahwa  larva  berkembang cukup  cepat  mencapai  fase  D-veliger
membutuhkan  waktu  hanya  ±  20  jam untuk  perlakuan  intensitas  cahaya  15watt (117  Lux)  dan  22  jam  untuk  10watt  (90 Lux),  disusul  5watt  (65  Lux)  dan  kontrol (ruang gelap atau 0 watt) yaitu dicapai 24 jam.  Perbedaan  perkembangan  harian embriogenesis ini, sesuai penjelasan  yang dikemukakan  oleh  Yen at  al .  (2006) bahwa  faktor  intensitas  cahaya  turut mempengaruhi perkembangan jenis bivalvia.  Lebih  jauh  dijelaskan  pula bahwa intensitas cahaya yang tidak terlalu tinggi  dapat  melindungi  tubuh  larva  pada stadia  veliger  dari  radiasi  ultra  violet. Intensitas  cahaya  yang  sesuai  dengan kehidupan  larva  dan  diimbangi  dengan kondisi  lingkungan  (suhu  dan  salinitas) berpotensi  memicu  ekspresi  genotip, sehingga  berdampak  pada  peningkatan aktivitas  enzim  dalam  mencerna  protein untuk proses pertumbuhan (Susilowati dan Sumantadinata,  2011;  Yen et  al .,  2006). Selanjutnya  dijelaskan  pula  bahwa  reaksi metabolime enzim kerang mutiara meningkat  dan  tumbuh  dengan  baik  pada kondisi  suhu  antara  26-29°C,  sementara salinitas  menurut      Doroudi et  al .  (1999) adalah  antara  27-32ppt.  Sebaliknya  pada suhu  medium  rendah  (10°C)  dapat menghambat aktivitas enzim dalam mencerna  protein,  sehingga  memper- lambat  periode  inkubasi  (Batu,  1982). Mantel  adalah  organ  penting  yang berfungsi  dalam  pembentukan  cangkang moluska  melalui  ekspresi  komponen protein dari sel (Gardner et al ., 2011).
3.2.  Kelangsungan Hidup dan Pertumbuhan
Analisis varians (Tabel 2)
meperlihatkan  bahwa  perlakuan  intensitas cahaya  bolham  lampu  pijar  memberikan respons  yang  berpengaruh  sangat  nyata (P<0,01)  terhadap  kelangsungan  hidup larva  kerang  mutiara  ( Pinctada  maxima ). Dengan  demikian  dapat  dikatakan  bahwa berbeda  intensitas  cahaya  yang  diberikan
berbeda  pula  hasil  kelangsungan  hidup larva  kerang  mutiara.  Uji  Beda  Nyata Jujur  (Tabel  3)  diperoleh    bahwa persentasi    kelangsungan  hidup  tertinggi tercatat pada perlakuan  kontrol atau ruang gelap  (0  watt)  dibandingkan  terhadap perlakuan  intensitas  cahaya  15  watt  (117 Lux)  dan  memberikan  respons  berbeda sangat  nyata  dan  berbeda  tidak  nyata terhadap  perlakuan  intensitas  cahaya 5watt  (65  Lux)  dan  10  watt  (90  Lux). Keadaan ini terlihat  jelas pada Gambar 1, bahwa  perlakuan  kontrol  (0  watt)  masih mendominasi kelangsungan hidup
tertinggi  yaitu  mencapai  sebesar  38% yang  terdiri  dari  larva  yang  menempel pada  kolektor  24,67%  (2.960  larva)  dan dinding  bak  13,33%  (1.600  larva)  dari jumlah  total  yang  ditebar  tiap  perlakuan sebanyak  12.000  larva.  Sementara  ukuran pertumbuhan larva pada akhir pengamatan tercatat  perlakuan  kontrol  atau  ruang gelap  (0  watt)  cenderung  lebih  besar  dan tidak  jauh  berbeda  dengan  hasil  pada intensitas  cahaya  lampu  5  watt  (65  Lux) dan  10  watt  (90  Lux)  (Gambar  2). Keadaan  ini  telah  dijelaskan  terdahulu bahwa intensitas cahaya yang cocok/sesuai dapat mempengaruhi perkembangan  dan  pertumbuhan  bivalvia (Yen et al ., 2006). Persentasi kelangsungan hidup tertinggi yang tercatat pada  perlakuan  kontrol  atau  ruang  gelap (0  watt)  adalah  diduga  bahwa  sebaran larva lebih senang menyebar dan penempel  pada  daerah  yang  gelap.
Dugaan  ini  dapat  dibenarkan,  sesuai dengan  penjelaskan  yang  dikemukakan oleh  Su et  al .  (2007)  dan  Zhao at  al .
(2003)  bahwa  tingkah  laku  sebaran  larva kerang mutiara, Pinctada martensii lebih condong  bersifat  phototaxis  negatif  atau tidak  tertarik  pada  cahaya  lampu  dan senang  menempel  pada  substrat  yang berwarna gelap.
Tabel 1.  Hasil pengamatan perkembangan embriogenesis larva kerang mutiara ( Pinctada  maxima )  pada  intensitas  cahaya  lampu  pijar  yang  berbeda berdasarkan klasifikasi  Haws and Ellis (2000), Hamzah (2008).
Kontrol (0watt)           Fase Keterangan 5watt    10watt 15watt (Ruang gelap) (65Lux)  (90Lux)  (117Lux) Sel Sperma                  Induk Jantan Sel Telur                    Induk Betina
Telur                      Pembuahan (vertilisasi)  ±45 menit
Embriogenesis
(Planktonik) Proses Pembelahan Sel
Trocophore               Pembentukan granula setelah pembelahan sel ±9j ±8j       ±7j terakhir sudah bersilia setelah berumur antara 7 - 9jam D-veliger Cangkang berbentuk D, garis ensel (hinge) ±24j     ±22j     ±20j mulai tampak umur antara 20 – 24 jam Umbo-veliger            Pembentukan cangkang kedua setelah ±14h     ±13h ±12h adanya tonjolan bagian dorsal yang disebut umbo , berumur antara 12 – 14 hari Eye –spot                Tampak bintik hitam pada dua sisi cangkang ±17h ±16h ±15h pertanda mulai menempel pada kolektor, berumur antara 15-17 hari Pedi-veliger Mulai terbentuk kaki (byssus) yang menonjol         ±20h ±19h ±18h (umbo akhir) pada bagian dorsal digunakan untuk menepel, berumur 18 – 20 hari Metamorfisis Fase transisi akhir planktonik, pembentukan ±22h ±20h ±20h (Bentik) cangkang telah sempurna lengkap dengan anterior, Plantigrade Posterior & byssus, berumur antara 20 – 22 hari Post-larva Berkembang & tumbuh dalam keadaan menempel ±24h ±22h ±22h pada kolektor, berumur antara 22-24 hari Spot (juvenil) Berkembang & tumbuh menjadi fase juvenil            ±30h ±29h ±29h berumur antara 29-30 hari Spat Bentuk morfologi telah lengkap menyerupai ±40h ±36h ±33h
anakan kerang mutiara ,berumur antara 33-40 hari
- Membelah menjadi 2 sel setelah ± 46 menit -  Membelah menjadi 4 sel setelah ± 53 menit -  Membelah menjadi 8, 16, 32 sel setelah ± 2 jam -  Fase morula (multi sel) pada  umur ± 2,5 jam -  Fase blastula dicapai  pada umur ± 3,5 jam
dan mulai bergerak berputar-putar - Fase gastrula dicapai setelah berumur ± 7 jam & bersifat fotonegatif  serta bergerak dengan silia
Demikian  juga  hasil  penelitian  yang dilakukukan  oleh  Hamzah  (2003,  2007) bahwa  larva  kerang  mutiara  ( Pinctada maxima )  maupun  larva  kerang  mabe ( Pteria  pengiun )  lebih  banyak  menempel pada  kolektor  yang  berwarna  gelap dibandingkan dengan kolektor yang berwarna  merah,  kuning,  hijau  dan  putih.
Tabel 2. Analisis varians kelangsungan hidup larva kerang mutiara bedasarkan perlakuan intensitas cahaya lampu pijar yang berbeda.
Sumber keragaman DB JK KT F_hitung       F.tabel 0,05        0,01 ______________________________________________________________________ Perlakuan cahaya 3 2.491.200 830,40   21,82**       3,49     5,95 Galat 12 456,600 38,05             - Total 15 2.949.656,6 - ______________________________________________________________________ Keterangan : ** = berpengaru sangat nyata pada tingkat kepercayaan 99%
Tabel 3. Hasil uji beda nyata jujur kelangsungan hidup larva kerang mutiara berdasarkan perlakuan intensitas cahaya lampu pijar yang berbeda.
______________________________________________________________________
Intensitas cahaya Rerata perlakuan Beda intensitas cahaya ______________________________________________________________________ 15watt (117 Lux) 140 - 5watt (65Lux) 920 780**        - 10watt (90Lux) 1040 800**       120 tn - 0watt (Ruang gelap)     1140 1000** 220 tn 100 tn - ______________________________________________________________________
BNJ 0,05 = 335,058;   BNJ 0,01 = 489,765 Keterangan : **= berbeda sangat nyata; tn = berbeda tidak nyata
Gambar 1.  Persentansi kelangsungan hidup larva kerang mutiara berdasarkan perlakuan intensitas cahaya lampu pijar yang berbeda.
Gambar 2.  Pertumbuhan harian larva kerang mutiara berdasarkan perlakuan intensitas cahaya lampu pijar yang berbeda.

## 3.3.  Kualitas Air
Pengamatan  kualitas  air  selama periode  pengamatan  antara  lain  suhu, salinitas  dan  derajat  keasaman  (pH) terlihat  pada  Gambar  3.  Pada  gambar  ini terlihat  bahwa  kondisi  suhu  yang  tercatat pada  perlakuan  kontrol  atau  ruang  gelap (0  watt)  bervariasi  antara  26,5-28,5 0 C dengan  nilai  rerata  27,42°C;  5  watt  (65 Lux)  antara  27-29°C  dengan  nilai  rerata 28,21°C  dan  10  watt  (90  Lux)  antara  28- 29°C  dengan  nilai rerata  28,43°C. Sementara  peralakuan  15  watt  (117  Lux) kondisi suhu bervariasi antara 28,3-29,2°C dengan  nilai  rerata  28,55°C.  Kondisi salinitas  pada  semua  perlakuan  hampir sama  yaitu  bervariasi  antara  32-33,5, sementara pH juga sama  yaitu  antara 7,5- 7,7.  Kondisi  kualitas  air  ini  masih  berada dalam kisaran ambang toleransi kehidupan larva  kerang  mutiara  ( Pinctada  maxima ) (Hamzah,  2013;  Alagarswami et  al ., 1983).

## IV.  KESIMPULAN
Persentasi  kelangsungan  hidup larva  lebih  tinggi  tercatat  pada  perlakuan kontrol  atau  ruang  gelap  (0watt)  yaitu
sebesar  38%  yang  terdiri  dari  24,67% (2.960 larva) menempel pada kolektor dan sisanya  13,33%  (1.600  larva)  menempel pada  dinding  bak  uji,  dari  jumlah  total yang  ditebar  tiap  perlakuan  sebanyak 12.000 larva dibandingkan dengan perlakuan  intensitas  cahaya  lampu  pijar yang lainnya. Perkembangan embriogenesis larva  kerang  mutiara  ( Pinctada  maxima ) yang  diletakan  pada  perlakuan  dengan intensitas cahaya 15watt (117 Lux) dan 10 watt  (90  Lux)  mencapai  fase  D-veliger dan  fase  post-larva  (mulai  menempel) yaitu  bersamaan  waktunya  yaitu  berturut- turut  20  jam  dan  22  hari.  Sementara perlakuan kontrol/ruang gelap (0watt) dan 5watt  (65  Lux)  mencapai  kedua  fase tersebut  pada  waktu  yang  sama  yaitu berturut-turut 24 jam dan 24 hari. Namun ukuran  pertumbuhan  larva  mencapai  fase spot (juvenil) tercatat perlakuan kontrol/ruang  gelap  (0  watt)  dan  5  watt (65 Lux) serta disusul intensitas cahaya10 watt  (90  Lux)  adalah  cenderung  lebih besar  dibandingkan  dengan  ukuran  larva yang  dipelihara  pada  intensitas  cahaya lampu pijar 15 watt (117 Lux).
Gambar 3.  Kondisi lingkungan media bak pemeliharaan larva berdasarkan perlakuan intensitas cahaya lampu pijar yang berbeda.

## UCAPATAN TERIMA KASIH
Ucapan terima kasih penulis tujukan  kepada  saudari  Mala  Hadianti,
yang telah sepakat melaksanakan kerjasama  riset  ini.  Luaran hasil dari riset ini  adalah  saudari  Mala  Hadianti  telah menyelesaikan Sarjana (S1) pada Fakultas Pertanian, Program Studi Budidaya Perairan Univ. Mataram.

## DAFTAR PUSTAKA
ASBUMI. 1996. Prosiding Seminar Nasional  Budidaya  Mutiara  di Indonesia  di  selenggarakan  pada Tgl 27 Nopember 1996 di Auditorium, Dep. Pertanian Jakarta. 72p. Alagarswami,  K.,  S.  Dharmaraj,  T.S. Velayudhan,  A.  Chellam,  A.C.C. Victor,  and  A.D.  Gandhi.  1983.
Larval  rearing  and  production  of spat of pearl oyster Pinctada fucata (GOULD). Aquaculture, 34:287-
301.
Batu, J.T.F.L. 1982. Pengantar ke fisiologi hewan  air.  (edisi  ketiga).  Fakultas Perikanan Dept. Hidrobiologi Bagian Biota Laut. Institut Pertanian Bogor. 212hlm. Zhao,  B.,  S.  Zhang,  and  P.Y. Qian.  2003. Larvae  settlemet  of  the  silver-  or goidlip  pearl  oyster, Pinctada maxima (Jameson)  in  response  to natural  biofilms  and  chemical cues. Aquaculture, 220:883-901.
Doroudi,  M.S.,  Southgate,  P.C.  and  R.J.
Mayer. 1999. The combined effects  of  temperature  and  salinity on  embryos  and  larvae  of  the black-lipped pearl oyster Pincyada margaritifera . Aquaculture Research , 30:271-277.
Gardner,  L.D.,  D.  Nills,  A.  Wiegand,  D. Leavesley,  and  A.  Euzur.  2011. Spatial  analysis  of  biominerali- zation  associated  gene  expression from the mantle organ of the pearl oyster, Pinctada  maxima .  BMC Genomics. http://www.biomed central.com/1471-2164/12/455.
[Diakses: 20 Agustus 2013].
Hamzah, M.S. 2003. Pengaruh warna spat kolektor  terhadap  daya  tempel larva  Kerang  Mutiara  ( Pinctada maxima )  dalam  bak  pendederan.
Dalam :  buku  pesisir  dan  pantai
Indonesia  VIII.    Ruytno,  Pramudji dan  I.  Supangat  ( eds. ).  Puslit. Oseanografi LIPI, Jakarta, hlm.79- 84.
Hamzah,  M.S.  2007.  Pengaruh  warna jaring  sebagai  “spat  kolektor” terhadap  daya  tempel  larva  kerang mabe  ( Pteria  penguin )  di  Teluk Kapontori, Pulau Buton – Sulawesi
Tenggara. Dalam : Prosiding Seminar Kelautan III.Muh. Taufiqrrohman, Urip Prayogi, Giman  dan  Arif  Winarno  ( eds .).
Universitas  Hangtuah  24  April 2007, Surabaya, hlm.:80-86. Hamzah, M.S. 2008.  Kelangsungan hidup dan  perkembangan  larva  kerang mutiara ( Pinctada maxima ) dengan pemberian  jenis  pakan  alami  yang berbeda. Dalam : Prosiding Seminar  Nasional  Kelautan  IV. Didik Hardianto dan Muh. Taufiqrrohman (eds.) Univ. Hangtuah 24 April 2008 Surabaya, hlm.:179-183.
Hamzah,  M.S.  2013.  Daya  penempelan larva  kerang  mutiara  ( Pinctada maxima )  pada  kolektor dengan posisi tebar dan kedalaman berbeda. J.  Ilmu  dan  Teknologi Kelautan Tropis , 5(1):60-68. Haws, M. and S. Ellis. 2000.  Aquafarmer information sheet: colectiong black-lipped  pearl  oyster  spat. Resources  Center  Univ.  of  Hawaii at Hilo, HI 96720 USA. Center for Tropical  and Subtropical  Aquacul- ture CTSA Publication No. 144. Marzuki,  R.  2010.  Pengaruh  pemberian kombinasi  pakan  alami  dengan jenis yang berbeda terhadap
perkembangan dan kelulushi-
dupan larva Kerang Mutiara
( Pinctada  maxima )  dalam  bak pendederan. Skripsi Fakultas Perikanan Univ. 45.  70hlm. Sudjana,  1991.  Desain  dan  analisis eksperimen,  Edisi  II.  Penerbit Tarsito, Bandung. 416hlm.
Susilowati,  R.  dan  K.  Sumantadinata. 2011.  Keragaman  genetik  tiram mutiara  sebagai  informasi  dasar untuk  pemuliaan  tiram  mutiara. Dalam :  refleksi  pengembangan budidaya  kekerangan  di  Indone- sia.  M.F.  Sugadi,  I  Nyoman  A. Giri,  dan  D.  Pringgenies  ( eds .). Badan  Penelitian  dan  Pengem- bangan  Kelaulatan  dan  Perikanan, Pusat  Penelitian  dan  Pengem- bangan Perikanan Budidaya,
Jakarta. Hlm.:53-67. Yen,  X.,  Zhang,  G.,  and  Yang  F.,  2006.
Effect  of  diet,  stoking  density  and environmental  factor  on  growth, survival  and    metamorphosis  of Manila. Ruditapes  philippinarum larvae. Aquaculture , 253:350-358.
Su,  Z.X.,  L.Huang,  Y.  Yan,  and  H.X.  Li.
2007.  The  effect  of  different substrate on pearl oyster, Pinctada martensii (Dunker) larvae settlement. Aquaculture ,  271:377- 383.
Diterima   : 8 September 2013 Direvisi    : 4 Desember 2013 Disetujui  : 17 Desember 2013