Stannum : Jurnal Sains dan Terapan Kimia, 3 (1) (2021) 1-8
Stannum : Jurnal Sains dan Terapan Kimia
Website: https://journal.ubb.ac.id/index.php/stannum doi: 10.33019/jstk.v3i1.2133 Research paper
Effectiveness of Matoa Leaf ( Pometia pinnata ) Extract as an Antibacterial Staphylococcus epidermidis
Efektivitas Ekstrak Daun Matoa ( Pometia pinnata ) sebagai Antibakteri Staphylococcus epidermidis
Rossalinda * , Fitria Wijayanti, dan Damayanti Iskandar
1) Department of Chemistry, Universitas of UIN Raden Fatah Palembang Universitas Islam Negeri Raden Fatah Palembang, Palembang, 30126
* Corresponding author: rossalinda791@gmail.com

## ABSTRACT
A natural alternative that can be used to inhibit the growth of Staphylococcus epidermidis bacteria is matoa  leaves ( Pometia pinnata ).  Matoa  leaves  contain secondary  metabolites such as flavonoids, tanins, and saponins which are known as an antibacterial. The purpose of this study was to determine the effectiveness of matoa leaves extract as an antibacterial agent for Staphylococcus epidermidis . The matoa leaves were extracted using the maceration method with 96% ethanol.This study used the disc diffusion method, using deodorant as a positive control, aquadest as a negative control and concentration variations matoa leaves extract of 15%, 20%, 25% and 30%. Antibacterial testing in this study was characterized by a clear zone or zone of inhibition around the disc paper. The results of the antibacterial test in this study have to different inhibition zones, that is a sample concentration of 15% the inhibition zone value is 0,125 mm. The sample concentration of 20% the inhibition zone is 3 mm. The sample concentration of 25% the inhibition zone  is 2,312 mm and the sample concentrasion of 30% the inhibition zone is 0,875 mm. The extract of matoa leaves can be used as an antibacterial, because according to Pan Chen Wu Tang and zao (2009) the extract of matoa leaves could be applied as inhibitor of the growth of Staphylococcus epidermidis at a sample concentration of 20% is in the weak to moderate category.
Key words : Antibacterial, Pometia pinnata, Staphylococcus epidermidis

## PENDAHULUAN
Indonesia  adalah  negara  yang  memiliki spesies    tumbuhan  yang  beragam,  sehingga tumbuhan-tumbuhan
tersebut dapat dimanfaatkan  oleh  masyarakat  setempat. Sebagian  kecil  masyarakat  di  Indonesia memanfaatkan  tumbuhan  matoa  sebagai  obat. Masyarakat Melayu di Indonesia memanfaatkan tumbuhan matoa sebagai obat demam, beri-beri dan  sakit  kulit.  Masyarakat  Sumatera  Selatan
juga  memanfaatkan  kulit  buah  matoa  sebagai obat  luka  bernanah,  sedangkan  daunnya  dapat digunakan sebagai obat bengkak karena keseleo (Rahimah et.al , 2013).
Matoa ( Pometia pinnata ) merupakan tumbuhan  yang  memiliki  akar  tunggang  dan cabang  yang  banyak,  tumbuhan  yang  rindang dengan  tinggi  pohon  mencapai  20-40  m.  Daun yang dimiliki oleh tumbuhan ini berwarna hijau dan  berbentuk  ujung  runcing  serta  bentuk pertulangan  menyirip  (Sidoretno et.al ,  2018).
Metabolit  sekunder  seperti  saponin,  flavonoid dan tanin  memiliki potensi untuk menghambat pertumbuhan  bakteri  (Lusiana et.al ,  2013). Beberapa metabolit sekunder tersebut dimanfaatkan sebagai antibakteri  karena dapat menghambat  sintesis  protein,  merusak  dinding sel serta dapat menghambat metabolisme energi pada bakteri (Cushnie et.al , 2005). Bakteri Staphylococcus  epidermidis dapat berkembang biak pada berbagai macam media. Kulit  manusia  merupakan  salah  satu  media berkembang biak bakteri. Bakteri Staphylococcus  epidermidis ini  tergolong  dalam bakteri  patogen  oportunistik,  dimana  bakteri tersebut memiliki siklus hidup yang cukup lama sesuai dengan media yang ditempati dan bakteri ini  dogolongkan  dalam  bakteri  gram  positif (Hamdiyati et.al ,  2018).  Bakteri Staphylococcus epidermidis adalah salah satu bakteri penyebab bau  badan.  Bakteri  tersebut  memecahkan molekul  dan  kelenjar  ketika  berkeringat. Kelenjar  yang  dipecah  oleh  bakteri  adalah kelenjar  apokrin  yang  bertugas  menghasilkan keringat  berlebih  ketika  beraktivitas.  Kelenjar tersebut dipecah oleh bakteri karena mengandung lemak dan protein, dimana lemak dan  protein  adalah  nutrisi  dari  bakteri (Hamdiyati et.al , 2018).
Penghambatan pertumbuhan bakteri penyebab  bau  badan  dapat  menggunakan antiperspiran. Antiperspiran merupakan deodoran yang bertujuan untuk menetralisir bau badan. Deodoran sintetik yang sering digunakan memiliki beberapa kandungan senyawa antibakteri  salah  satunya  yaitu aluminium chlorohydrate (ACH)  yang  berfungsi  untuk menekan pertumbuhan bakteri dan mengurangi produksi  keringat  dengan  menutup  pori-pori. Namun  penggunaan  deodoran  sintetik  dalam jangka  panjang  dapat  menyebabkan  masalah, yaitu  kanker  kulit  (Mei,  2016).  Daun  matoa ( Pometia  pinnata )  merupakan  alternatif  bahan alam  yang  dapat  digunakan  untuk  mencegah pertumbuhan
bakteri
Staphylococcus epidermidis ,  karena  bahan  alam  merupakan senyawa  antibakteri  yang  aman  untuk  tubuh (Mei, 2016).
Penelitian  terdahulu  mengatakan  bahwa pertumbuhan  bakteri  genus Staphylococcus yaitu Staphylococcus aureus dapat dihambat oleh senyawa metabolit sekunder yang terdapat pada kulit batang matoa. Senyawa metabolit sekunder yang  terkandung  dalam  kulit  batang  matoa tersebut  adalah  saponin,  flavonoid  dan  tanin. Kemampuan  tersebut  dapat  dilihat  pada diameter  zona  hambat  berdasarkan  uji  difusi
cakram, yaitu pada kisaran diameter 10-20 mm. Diameter tersebut memiliki pengaruh yang kuat sebagai respon hambatan pertumbuhan terhadap bakteri Staphylococcus aureus (Ngajow et.al, 2013) .

## METODOLOGI

## Bahan
Bahan-bahan  yang  digunakan  yaitu,  daun matoa diperoleh dari Sekayu, bakteri Staphylococcus epidermidis diperoleh dari Balai Besar  Laboratorium  Kesehatan  (BBLK), etanol 96%, nutreint  agar (NA), Mueller  Hinton  Agar (MHA), kertas saring, akuades, BaCl 2 .2H 2 O Emsure ® 1,175%, kloroform Emsure ® , NaCl Emsure ® 0,9%  dan  asam  sulfat Emsure ® 0,36N.

## Alat
Alat-alat  yang  digunakan  yaitu,  blender Nima ® , gelas kimia Pyrex ® dan iwaki , pipet tetes, cawan  petri Normax ,  autoklaf,  gelas  ukur Pyrex®,  kawat  ose,  mikropipet,  labu  ukur Pyrex ® , pemanas,  timbangan  analitik Ohaus , spatula,  inkubator,  oven Memmert ,  desikator, erlenmeyer Pyrex ® , stirrer Thermo , penangas air, tabung  reaksi Pyrex ® , rak  tabung  reaksi, aluminium foil , rotary evaporator Buchi Sibata .
Prosedur a. Preparasi dan ekstraksi daun matoa Daun matoa dicuci kemudian dipotong kecil- kecil  lalu  dikeringkan  menggunakan  cahaya matahari,  setelah  kering  kemudian  diblender hingga  menjadi  serbuk.  Serbuk  daun  matoa kemudian direndam dengan etanol 96% selama 3x24  jam.  Setelah  itu  campuran  serbuk  daun matoa dan etanol disaring dengan kertas saring, hasil filtrat yang diperoleh  kemudian diuapkan menggunakan rotary  evaporator .  Selanjutnya dilakukan  uji  skrining  fitokimia  untuk menentukan senyawa metabolit sekunder yang terkandung pada daun matoa (Sari et.al , 2017).
b. Uji Skrining Fitokimia
Berikut ini merupakan uji skrining  fitokimia pada ekstrak daun matoa yang dilakukan dengan beberapa  pereaksi,  diantaranya  adalah  sebagai berikut:
1. Uji Senyawa Flavonoid Uji flavonoid dilakukan dengan menambahkan  1  ml  ekstrak  daun  matoa, kemudian ditambahkan serbuk Mg secukupnya setelah  itu  ditambahkan 2 tetes HCl.  Reaksi  yang  ditimbulkan  akan  berubah
menjadi warna jingga apabila positif terdapat senyawa flavonoid.
2. Uji Senyawa Alkaloid Uji  alkaloid  dilakukan  dengan  2  pereaksi, yang  pertama  5  tetes  reagen  Mayer diteteskan  pada  1  ml  sampel.  Uji  alkaloid positif  pada    pereaksi  mayer  menandakan terbentuk endapan putih. Uji pereaksi kedua adalah  5  tetes  reagen  Wagner  diteteskan pada  1  ml  sampel,  uji  positif  pada  reagen Wagner menandakan terbentuknya endapan coklat.
3. Uji Senyawa Saponin Uji saponin dilakukan dengan menambahkan 1  ml  sampel  dan  air  panas  sebanyak  1  ml, kemudian  dikocok  hingga  terbentuk  buih. Setelah itu ditambahkan 2 tetes HCl pekat. Uji positif apabila buih tidak hilang.
4. Uji Senyawa Triterpenoid atau Steroid Uji  steroid  atau  triterpenoid  dilakukan dengan  menambahkan  1  ml  sampel  dan  3 tetes  asam  asetat  glasial,  kemudian ditambahkan  3  tetes  H 2 SO 4 dan  dikocok perlahan.  Adanya  steroid  ditunjukkan  oleh warna biru atau hijau, sedangkan triterpenoid terbentuknya warna merah atau ungu.
5. Uji Senyawa Tanin Uji tanin dilakukan dengan menambahkan 1 ml sampel dan 2 tetes FeCl 3 1%. Reaksi yang ditimbulkan  ketika  uji  tanin  positif  adalah terbentuk warna hijau kehitaman.

## c. Uji Aktivitas Antibakteri
1. Pembuatan Media Inokulum Bakteri Uji Sebanyak 0,46 gr Nutrient Agar (NA) diambil dan    dilarutkan  pada  20  ml  akuades  dalam erlenmeyer. Kemudian dihomogenkan menggunakan  stirrer  hingga  mendidih  diatas penangas air. Sebanyak 5 ml larutan diambil dan dituangkan  pada masing-masing  tabung  reaksi, ditutup  menggunakan aluminium  foil .  Langkah terakhir,  selama  15  menit  disterilkan  dalam autoklaf  dengan  temperatur  121 o C.  Kemudian didiamkan  pada  suhu  ruang  hingga  media memadat (Ngajow at.al , 2013).
2. Pembuatan Larutan Mc. Farland Tahap  pertama  asam  sulfat  0,36  N  diambil sebanyak  99,5  ml  kemudian  dicampurkan dengan  0,5  ml  larutan  BaCl 2 .2H 2 O  1,175% dimasukkan  dalam  erlenmayer.  Selanjutnya campuran  tersebut  dikocok  hingga  larutan menjadi  keruh.  Larutan Mc.  Farland  digunakan sebagai standar kekeruhan suspensi bakteri uji. 3. Pembuatan Suspensi Bakteri Uji
2ml larutan NaCl 0,9% dimasukkan ke tabung reaksi, bakteri uji yang terdapat pada media agar inokulum bakteri diambil dengan menggunakan kawat ose steril dan disuspensikan dalam tabung reaksi  yang  berisi  larutan  NaCl  0,9%  hingga diperoleh kekeruhan yang sama dengan larutan Mc.  Farland  sebagai  larutan  standar  (Ngajow at.al , 2013).
4. Pembuatan Media Uji Mueller  Hinton  Agar (MHA)  merupakan media  uji  yang  digunakan  pada  penelitian  ini. MHA  diambil  sebanyak  38  gr  dimasukkan kedalam  1  L  akuades  kemudian  dididihkan. Selanjutnya pada temperatur  121 o C selama 15 menit media tersebut disterilkan dalam autoklaf. Terakhir,  masing-masing  cawan  petri  yang digunakan dimasukkan media yang telah dibuat dengan  ketebalan  media  mencapai  9  mm. Selanjutnya  ditutup  dan  didiamkan  hingga media memadat (Ngajow at.al, 2013). Kemudian  dilakukan  persiapan  kertas cakram,  kontrol  negatif  dan  kontrol  positif, setelah  itu  dibuat  variasi  konsentrasi  ekstrak daun  matoa  dengan  variasi  konsentrasi  antara sampel dan pelarut 15%, 20%, 25% dan 30%. Uji aktivitas bakteri dilakukan dengan menggunakan  metode  difusi  cakram.  Suspensi bakteri  uji  diambil  sebanyak  20  µL  diletakkan menggunakan  swap  steril  dengan  cara  zigzag pada  media  dalam  cawan  petri.  Kertas  cakram yang  digunakan  berdiameter  6  mm.  Kemudian dibuat  kuadran  atau  batasan  untuk  daerah kontrol  negatif,  kontrol  positif,  dan  ekstrak matoa  dengan  variasi  konsentrasi  15%,  20%, 25%  dan  30%.  Setelah  itu  kertas  cakram diletakkan  sesuai  dengan  kuadran  yang  sesuai pada media. Selanjutnya pada temperatur 37 o C selama  24  jam  media  tersebut  diinkubasi. Langkah  tersebut  diulangi  sebanyak  4  kali pengulangan.  Terakhir  dilakukan  perhitungan diameter  zona  hambat  dengan  menggunakan penggaris dalam satuan mm.
Berikut merupakan rumus perhitungan diameter zona hambat:
Zona Hambat = (𝐷𝑣 − 𝐷𝑐) + (𝐷ℎ − 𝐷𝑐)
2
Keterangan: Dv = Diameter vertical Dc = Diameter cakram Dh = Diameter horizontal

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Tabel  1  berikut  ini  merupakan  hasil  yang diperoleh dari ekstraksi daun matoa.

## Tabel 1. Hasil ekstraksi daun matoa
Pelarut Jumlah sampel Jumlah pelarut Hasil ekstrak Hasil Rendemen Etanol 96% 250 gram 3000 mL 25,24 gram 10.096%
250  gram  sampel  yang  direndam  dengan menggunakan  pelarut  etanol  menghasilkan ekstrak sebesar 25,24 gram. Perlakuan tersebut menghasilkan  jumlah  rendemen  sebanyak 10,096%.  Kuantitas  senyawa  aktif  metabolit sekunder  yang  terkandung  pada  ekstrak  daun matoa  dapat  diketahui  dari  perhitungan rendemen tersebut.
Uji skrining fitokimia Ekstrak  yang dihasilkan kemudian dilakukan proses  skrining  fitokimia  untuk  mengetahui senyawa  metabolit  sekunder  yang  terkandung pada  daun  matoa  (Huda et  al. ,  2019).  Tabel  2 berikut  ini  merupakan  hasil  uji  skrining fitokimia.
Tabel 2. Data Uji Fitokimia Ekstrak Daun Matoa ( Pometia pinnata ) No  Identifikasi Ekstrak Hasil Uji 1 Flavonoid Daun matoa Terbentuk warna jingga (+) 2 Tanin Terbentuk warna hijau kehitaman (+) 3 Saponin Berbuih (+) 4 Steroid Tidak terbentuk cincin (-) 5 Alkaloid Tidak terdapat endapan coklat (-)
Hasil tersebut menunjukkan bahwa metabolit sekunder  yang  terdapat  pada  ekstrak  daun matoa adalah saponin, flavonoid dan tanin.
Hasil positif yang ditunjukkan pada flavonoid ditandai  dengan  terbentuknya  warna  jingga. Warna  jingga  yang  terbentuk  karena  adanya reaksi antara serbuk HCl dan Mg yang digunakan dapat  membentuk  garam  flavilium  sehingga terjadinya pembentukan warna jingga. Penambahan  HCl  akan  membentuk  reaksi hidrolisis,  O-glikosil  akan  dihirolisis  menjadi aglikon kemudian ion H + pada HCl yang bersifat
elektrofilik akan menggantikan glikosil. Gambar 1  berikut  merupakan  reaksi  antara  flavonoid, HCl dan Mg.
Gambar 1 . Reaksi antara flavonoid dengan logam HCl dan Mg (Marliana et.al, 2005)
Keberadaan  tanin  ditandai  dengan  adanya warna  hijau  kehitaman.  Adanya  reaksi  antara FeCl 3 dengan  gugus  hidroksil  pada  tanin menyebabkan  terbentuknya  warna  hijau kehitaman.  Tanin  akan  membentuk  senyawa kompleks dengan FeCl 3 , pembentukan senyawa kompleks  tersebut  terjadi  ketika  atom  oksigen pada  tanin  memiliki  sepasang  elektron  bebas sehingga PEB tersebut didonorkan pada ion Fe 3+ yang menjadi atom pusat. Gambar 2 berikut ini merupakan reaksi antara FeCl 3 dan tanin.
Gambar 2. Reaksi Antara Tanin dan FeCl 3 (Nuryanti and Pursitasari, 2014)
Saponin  menunjukkan  hasil  positif  yang ditandai  dengan  larutan  yang  berbuih  jika ditambahkan dengan air panas, kemudian buih tidak  hilang  ketika  ditambahkan  dengan  HCl pekat.  Buih  yang  tidak  hilang  ketika penambahan  HCl  disebabkan  karena  buih tersebut tidak terpengaruh oleh asam sehingga buih tetap stabil dan tidak hilang. Saponin dapat menurunkan tegangan permukaan pada air yang dapat  mengakibatkan  adanya  buih  pada permukaan  air  ketika dikocok. Terjadinya  buih
O OH O 2 O OH OH +    MgCl 2 MgCl 2 + O OH OH 2 O OH OH +  MgCl 2 2 2HCl Mg Garam Flavilium Jingga FeCl 3 O OH OH OH HO +    3 O HO OH O O H H O O O HO OH H H O OH HO O O H H Fe +    3Cl -
pada larutan tersebut karena terdapat glikosida pada saponin memiliki kemampuan membentuk buih  dalam  air  ketika  dihidrolisis  menjadi glukosa (Muthmainnah, 2017). Gambar 3 berikut ini merupakan reaksi antara air dan saponin.
Gambar 3 . Reaksi Antara Saponin dan Air (Marliana et.al, 2005)

## Uji antibakteri
Zona  hambat  uji  antibakteri  ekstrak  daun matoa terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis dapat dilihat pada tabel 3 berikut.
Tabel 3. Zona hambat ekstrak daun matoa terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis Konsentrasi ekstrak Diameter zona hambat (mm) Rata- rata (mm) Respon hambat menurut Pan Chen Wu Tang (2009)
P1 P2 P3 P4 15% 1,5 0 0 0 0,125 Lemah 20% 3 2,5 4 2,5 3 Lemah- sedang 25% 1,2 5 1,5 4 2,5 2,312 Lemah 30% 1 0 2,5 0 0,875 Lemah Kontrol (-) 0 0 0 0 0 lemah Kontrol (+) Kloramfenikol menurut Makmun Makmun et.al. , 2020 30 Kuat Kontrol (+) Kloramfenikol menurut Utomo et al. , 2018 25 Kuat Kontrol (+) Kloramfenikol menurut Kumayas et.al. , 2015 27,55 Kuat
Uji  antibakteri  dilakukan  dengan  variasi konsentrasi  ekstrak  daun  matoa  yaitu  15%, 20%,  25%,  30%,  kontrol  positif  dan  kontrol negatif.  Sifat  netral  yang  dimiliki  oleh  akuades tidak  memberikan  hambatan  pertumbuhan terhadap  bakteri,  sehingga  pada  akuades digunakan  sebagai  kontrol  negatif.  Deodoran merk x digunakan sebagai kontrol positif karena masyarakat  modern  menggunakan  deodoran untuk menetralisir bau badan.
Rata-rata diameter yang dimiliki oleh kontrol positif adalah 0 mm, artinya kontrol positif yang digunakan  tidak  mampu  berperan  sebagai
antibakteri  terhadap  bakteri Staphylococcus epidermidis .  Kandungan  zat  antibakteri  yang terdapat  pada  kontrol  positif  sangat  rendah sehingga  kemampuan  untuk  menghambat bakteri tidak berlangsung secara maksimal.
(Makmun et.al, 2020) mengatakan bahwa, zat antibakteri  yang  baik  digunakan  sebagai perbandingan kontrol positif adalah kloramfenikol,  bakteri Staphylococcus  aureus merupakan  bakteri  yang  digunakan  pada penelitian  Makmun  (Makmun,  Surdam  and Gunawan, 2020) dengan diameter zona hambat kloramfenikol  sebesar  30  mm.  Kloramfenikol merupakan  zat  antibakteri  yang  sangat  kuat, karena  kloramfenikol  memiliki  kemampuan untuk menghambat sintesis protein bakteri dan senyawa  dari  kloramfenikol  dapat  berikatan dengan ribosom bakteri secara reversible . (Utomo et.al ,  2018)  mengatakan  bahwa, kemampuan  kloramfenikol  sebagai  kontrol positif antibakteri Staphylococcus aureus sangat kuat dengan diameter zona hambat sebesar 25 mm.  Kloramfenikol  digunakan  sebagai  kontrol positif  karena,  kloramfenikol  berspektrum  luas sehingga dapat digunakan sebagai antibakteri.
Kloramfenikol  memilki  kemampuan  yang sangat  kuat  sebagai  antibakteri Staphylococcus aureus ,  dengan  nilai  rata-rata  diameter  zona hambat sebesar 27,55 mm. Hal tersebut terjadi karena kloramfenikol memilki sifat bakteriostatik  yang  memiliki  spektrum  luas sehingga dapat digunakan sebagai antibakteri Konsentrasi pada kontrol negatif menghasilkan  zona  hambat  0  mm,  karena akuades merupakan pelarut yang bersifat netral sehingga  tidak  memberikan  hasil  positif  pada pengujian  (Sulastrianah et.al, 2007).  Gambar  4 berikut  ini  menunjukkan  grafik  rata-rata  zona hambat antibakteri ekstrak daun matoa.
Gambar 4. Grafik rata-rata zona hambat antibakteri ekstrak daun matoa
0 30 0,125 3 2,312 0,875 0 10 20 30 40 Zon a H amb at (mm) Konsentrasi (%) O OH H H OH H OH CH 2 OH O C H O H O H O H O H O H H
Kondisi optimum diameter hambatan bakteri dari  penelitian  yang  dilakukan  masuk  dalam kondisi  optimum  lemah  hingga  sedang  dengan konsentrasi  20%  dan  diameter  3  mm. Berdasarkan gambar 4.4 grafik yang dihasilkan dari  variasi  konsentrasi  zat  antibakteri  ekstrak daun  matoa  mengalami  penurunan.  Salah  satu penyebab  penurunan  zona  hambat    adalah resistensi  dari  bakteri.  Menurut  (Huda,  2016), sifat  resistensi  yang  dapat  ditimbulkan  oleh bakteri  dikendalikan  oleh  sistem  yang  disebut dengan  gen  resistensi  pada  kromosom  dan plasmid  bakteri.  Gen  resistensi  yang  ada  di kromosom dapat dipicu oleh faktor luar seperti zat antibakteri. Resistensi yang efektif terdapat pada  pembawa  sifat  resistensi  yang  ada  di plasmid,  karena  mampu  memperbanyak  diri dengan pindah ke sel-sel yang lain dengan cepat.
Menurut (Pratiwi, 2008), bakteri mengembangkan  resistensi  dirinya  dengan berbagai  cara  yaitu  pertama,  enzim  yang dihasilkan  dari  metabolisme  bakteri  dapat merusak  molekul  antibakteri.  Kedua,  bakteri dapat  membuat  pompa  khusus  seperti  pompa efluks  untuk  membawa  zat  antibakteri  keluar dari selnya. Ketiga, bagian sel tertentu yang biasa diserang  oleh  antibakteri  memiliki  kekebalan bakteri yang lebih kuat.
Ekstrak  daun  matoa  dapat  menghambat pertumbuhan  bakteri  disebabkan  karena memiliki kandungan senyawa  metabolit sekunder diantaranya adalah saponin, flavonoid dan  tanin.  Menurut  (Sulastrianah et.al, 2007) flavonoid,  tanin  dan  saponin  dapat  merusak membran  dan  dinding sel  pada  bakteri  dengan proses yang berbeda.
Gambar 5. Mekanisme penyerangan saponin terhadap dinding sel bakteri
Saponin dapat digunakan sebagai antibakteri karena  mampu  merusak  dinding  sel  dan membran  sel  bakteri,  dimana  dinding  sel  dari bakteri  tersusun  atas  peptidoglikan  dan  asam teikoat  yang  menempel  pada  permukaan  luar membran sel. Sifat seperti detergen yang dimiliki oleh  penyusun  dinding  sel  bakteri  tersebut menyebabkan  saponin  bereaksi  dengan  cara
merusak  permeabilitas  membran  sel  dan menurunkan  tegangan  permukaan  dinding  sel bakteri  (Sulastrianah et.al, 2007).  Mekanisme penyerangan  saponin  terhadap  dinding  sel bakteri disajikan pada Gambar 5.
Mekanisme  flavonoid  sebagai  antibakteri adalah  dengan  merusak  protein  penyusun sitoplasma  dan  membran  sel  bakteri  sesuai dengan  gambar  6.  Protein  membran  sel  dan sitoplasma  bakteri  akan  berikatan  dengan  H yang  terdapat  pada  senyawa  flavonoid.  Ikatan yang  terbentuk  akan  menyebabkan  protein rusak  dengan  mempengaruhi  permeabilitas membran  sel  dan  sitoplasma,  sehingga  terjadi ketidakseimbangan  ion  dalam  sel  dan  terjadi kerusakan sel (Sulastrianah et.al, 2007). Gambar 6  berikut  ini  menunjukkan  mekanisme penyerangan  flavonoid  terhadap  membran  sel dan sitoplasma bakteri.
Gambar 6. Mekanisme penyerangan flavonoid terhadap membran sel dan sitoplasma bakteri
Tanin  dapat  digunakan  sebagai  antibakteri karena  mampu  menghambat  kerja  enzim transkriptase, dimana enzim tersebut merupakan  enzim  alami  yang  dimiliki  oleh bakteri yang digunakan untuk mensintesis DNA. Penyusun  dari  DNA  bakteri  adalah  beberapa asam  amino  yang  terikat  oleh  ikatan  peptida. Tanin mampu menghambat kerja enzim dengan melakukan  penyerangan  terhadap  ikatan peptida,  sehingga  dapat  mengganggu  sintesa peptidoglikan  pada  DNA  bakteri  yang  dapat menyebabkan  kerusakan  sel  (Ngajow at.al , 2013).  Gambar  7  betikut  ini  menunjukkan mekanisme  penyerangan  tanin  terhadap  DNA bakteri.
Penelitian yang dilakukan oleh (Surjowardojo et.al, 2016),  memiliki  kategori  zona  hambat sedang,  sehingga  memiliki  kesamaan  dengan penelitian  pada  ekstrak  daun  matoa.  Terdapat beberapa  faktor  yang  dapat  mempengaruhi, yaitu  diantaranya  stabilitas  zat  aktif  suatu tanaman.
Peptidoglikan dan asam teikoat O OH H H OH H OH CH 2 OH O C O O O O H C H NH 3 R O OC Protein
Gambar 7. Mekanisme penyerangan tanin terhadap DNA bakteri
Stabilitas  zat  aktif  yang  dimiliki  oleh  suatu tanaman adalah tingkat usia tanaman. Tanaman yang  usia  nya  masih  muda  memiliki metabolisme  zat  aktif  yang  belum  optimal, sehingga  jumlah  zat  aktif  yang  ditimbun  pada tanaman  usia  muda  lebih  sedikit.  Menurut (Yuhernita et.al, 2011),  variasi  senyawa metabolit  sekunder  tegantung  dari  faktor lingkungan  dan  faktor  dalam  tumbuhan.  Selain itu  metabolit  sekunder  yang  aktif  secara maksimal  dapat  dipengaruhi  oleh  tingkat  usia dan  kematangan  suatu  tumbuhan.  Menurut (Salim et.al, 2016),  yang  menyatakan  bahwa pembentukan  metabolit  sekunder  memiliki hubungan  yang  linear  dengan  unsur  hara  yang terdapat  pada  tanaman,  yaitu  N,  K,  bahan organik dan C. Hal tesebut menunjukkan bahwa semakin  banyak  unsur  hara  pada  tanah  maka tumbuhan  tersebut  memilki  kualitas  dan kuantitas kandungan zat aktif yang baik.

## KESIMPULAN
Kesimpulan  penelitian  yang  telah  dilakukan adalah  efektivitas  ekstrak  daun  matoa  sebagai antibakteri Staphylococcus  epidermidis dengan variasi konsentrasi dapat dikategorikan sebagai daya  hambat  lemah  hingga  sedang  pada konsentrasi  20%,  dimana  metabolit  sekunder yang  terkandung  pada  daun  matoa  ( Pometia pinnata ) diantaranya adalah saponin, flavonoid dan tanin.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Terima kasih kepada Balai Besar Laboratorium Kesehatan (BBLK) Palembang dan Universitas  Sriwijaya  Negeri  Palembang,  yang
telah menerima dan menyediakan tempat untuk melakukan  serta  mengelola  sampel  pada penelitian ini.

## REFERENSI
Cushnie,  T.  P.  T.  and  Lamb,  A.  J.  (2005).
Antimicrobial activity of flavonoids’, International Journal of Antimicrobial Agents , 26, pp. 343 – 356. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2005.09.002.
Huda, C. (2019). Uji Aktivitas Antibakteri Fraksi
Dari Maserat. 3(1).
Huda, M. (2016). Resistensi Bakteri Gram Negatif Terhadap  Antibiotik  Di  UPTD  Balai Laboratorium  Kesehatan  Lampung  Tahun 2012-2014. 5(1).
Kumayas, A. R., Wewengkang, D. S. and Sudesi, S.
(2015). Aktifitas Antibakteri Dan Karateristik Gugus Fungsi. Jurnal Ilmia Farmasi , 4(1), pp. 32 – 44. Lusiana, Kesi. Soetjipto, Hartati. Hastuti, D. K. A. (2013). Aktivitas Antibakteri dan Kandungan Fitokimia  Ekstrak  Daun  Waru  Lengis ( Hibiscus  tiliaceus  L .)  sebagai  Bahan  Dasar Pembuatan Sampo. (April), pp. 631 – 638. Makmun,  A.,  Surdam,  Z.  and  Gunawan,  A.  M. (2020).  Uji  Efektivitas  Ekstrak  Jintan  Hitam ( Nigella  sativa )  terhadap  Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus pada  Medium MHA (Mueller Hinton Agar). Jurnal kesehatan , 3(1), pp. 1 – 9. Marliana, S. D. and Suryanti, V. (2005). Skrining Fitokimia  dan  Analisis  Kromatografi  Lapis Tipis  Komponen  Kimia  Buah  Labu  Siam ( Sechium  edule  Jacq.Swartz. )  dalam  Ekstrak Etanol. Biofarmasi , 3(1), pp. 26 – 31. Mei, D. (2016). Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus  epidermidis . Unnes  Journal  of Life Science , 4(1), pp. 60 – 65. Muthmainnah  (2017).  Skrining  Fitokimia Senyawa  Metabolit  Sekunder  dari  Ekstrak Etanol  Buah  Delima  ( Punica  granatum  L .) Dengan Metode Uji Warna. XIII(2).
Ngajow, M., Abidjulu, J. and Kamu, V. S. (2013). Pengaruh  Antibakteri  Ekstrak  Kulit  Batang Matoa  ( Pometia  pinnata )  terhadap  Bakteri Staphylococcus aureus secara In vitro. Jurnal MIPA UNSRAT Online , 2(2), pp. 128 – 132. Nuryanti,  S.  and  Pursitasari,  D.  (2014),  Uji Kualitatif Senyawa Metabolit Sekunder Pada Daun  Palado  ( Agave  angustifolia )  Yang Diekstraksi  Dengan  Pelarut  Air  dan  Etanol. Akademika Kimia , 3(August), pp. 165 – 172. Pratiwi,  R.  H.  (2008).  Mekanisme  Pertahanan Bakteri  Patogen  Terhadap  Antibiotik  Rina
DNA Protein C H C R 1 H 3 N O O + H N H C H C R 2 O O H H 2 O C H C R 1 H 3 N O N C H C R 2 H O O ..... Ikatan Peptida O OH OH OH HO
Hidayati Pratiwi. Rahimah.  Endah  Sayekti.  Afghani  Jayuska (2013).  Karakterisasi  Senyawa  Flavonoid Hasil Isolat dari Fraksi Etil Asetat Daun Matoa ( Pometia pinnata J.R.Forst &G.Forst). 2(2), pp. 1 – 6.
Salim,  Milana.  Sulistyaningrum,  Novi.  Isnawati, Ani.  Sitorus,  Hotnida.  Yahya. dan  Ni’mah,  T. (2016).  Karakterisasi  Simplisia  dan  Ekstrak Kulit Buah Duku ( Lansium domesticum Corr ) dari  Provinsi  Sumatera  Selatan  dan  Jambi. 6(2), pp. 117 – 128. Sari,  R.,  Muhani,  M.  and  Fajriaty,  I.  (2017).  Uji Aktivitas  Antibakteri  Ekstrak  Etanol  Daun Gaharu ( Aquilaria microcarpa Baill .) terhadap Bakteri Staphylococcus  aureus dan Proteus mirabilis . original article , 4(3), pp. 143 – 154. Sidoretno,  W.  M.  and  Abdurrab,  U.  (2018). Aktivitas  Antioksidan  Daun  Matoa  ( Pometia pinnata ) dengan Variasi Suhu Pengeringan 1. Jurnal Indonesia Natural Research Pharmaceutical , 3(1), pp. 16 – 25. Sulastrianah.  Imran  dan Fitria, E.  S.  (2007).  Uji Daya Hambat Daun Sirsak ( Annona muricata L .)  dan  Daun  Sirih  ( Piper  betle  L. )  terhadap Pertumbuhan Bakteri Escherichia coli . pp. 76 – 84.
Surjowardojo,  Puguh.  Susilorini,  Tri  Eko.  Sirait, G. R. B. (no date) ‘ Daya Hambat Dekok Kulit Apel Manalagi ( Malus sylvestrs Mill .) terhadap Pertumbuhan  Staphylococcus  aureus  dan Pseudomonas sp Penyebab Mastitis Pada Sapi Perah. 16(2), pp. 40 – 48. Utomo,  S.  B. et  al. (2018).  Uji  Aktivitas Antibakteri  Senyawa  Hexadecyl  trimethyl ammonium-Bromide terhadap
Bakteri
Staphylococcus  aureus dan Escherichia  coli Antibacterial  Activity  Test  of  the  C-4- methoxyphenylcalix [4] resorcinarene
Compound Modified by Hexadecyl trimethyl ammonium. Jurnal  Kimia  dan  Pendidikan Kimia , 3(3), pp. 201 – 209. Yanti Hamdiyati, Kusnadi, I. R. (2018). Aktivitas Antibakteri  Ekstrak  Daun  Patikan  Kebo ( Euphorbia  hirta )  terhadap  Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus  epidermidis ’, Journal of Chemical Information and Modeling , 12(2). doi: 10.1017/CBO9781107415324.004. Yuhernita dan Juniarti (2011) Analisis Senyawa Metabolit Sekunder dari Ekstrak Daun Surian yang Berpotensi  sebagai Antioksidan. 15(1), pp. 48 – 52.