## Pertumbuhan dan Biomassa Albizia saponaria

## yang Diinokulasi Fungi Arbuskula Mikoriza Lokal Sulawesi Tenggara
( Growth and Biomass Albizia saponaria on Local Arbuscular Mycorrhiazae Fungi From Southeast Sulawesi )
Faisal Danu Tuheteru 1 dan Husna 1
1 Staf Pengajar Jurusan Kehutanan Fak. Pertanian Universitas Haluoleo Kendari

## ABSTRACT
The study of effect of local AMF species from Southeast Sulawesi on A. saponaria was not yet conducted. The aim of this research was to know the effectiveness of local AMF species. A completely randomized design with three replications was used in this research. The treatments tried were no inoculation of AMF (A), inoculated with AMF inoculum 10 g. -1 polybag (B), and 20 g. -1 polybag (C). The seedling parameters observed were height, diameter, number of leaves, shoot biomass,  root  biomass,  total  biomass,  number  of  nodule  and  percentage  of  root  colonization.  Result  of  the  research showed that the application of AMF inoculum 10 g. -1 polybag (B) 20 g. -1 and polybag (C) tended to give the best effect on increasing all of the parameters observed compared of control treatment.
Keywords: Albizia saponaria , AM fungi, Biomass, Growth

## PENDAHULUAN
Sebagian  besar  tanaman  daratan  (±  80%)  dapat berasosiasi  dengan kelompok  fungi  yang disebut  Fungi mikoriza arbuskula (FMA). FMA merupakan sumberdaya alam hayati potensial yang terdapat di alam dan dapat ditemukan di  berbagai ekosistem, serta dapat dijadikan sebagai pupuk hayati/pupuk biologis (Mansur, 2003;  Smith  and  Read,  2008)  karena  memiliki  peran dalam  perbaikan  kesuburan  tanah  dan  meningkatkan pertumbuhan  tanaman  (van  der  Heijden et  al., 2006). Peran  tersebut  terjadi  melalui  1)  peningakatan  serapan unsur hara terutama P (Smith and Read, 2008; Harrison et  al., 2010),  2)  meningkatkan  ketahanan  tanaman terhadap  kekeringan  (Ruiz-Lozano  and  Aroca,  2010), salinitas  (Giri  and  Mukerjii,  2004),  logam  berat  (Rao and  Tak,  2001),  3)  melindungi  akar  tanaman  dari serangan  pathogen  akar  (Pozo et  al., 2010),  4) menghasilkan  zat  pengatur  tumbuh  seperti  auksin, giberelin dan cytokinin (Ludwig-Müller, 2010), 5) FMA dapat  memperbaiki  struktur  dan  agregasi  tanah (Nichols,  2008),  serta  6)  menstimulasi  nodulasi  dan fiksasi nitrogen pada tanaman legum (Muleta, 2010)
Publikasi  jurnal  internasional  menginformasikan bahwa  tanaman  legum  berasosasi  baik  dengan  FMA. Sekitar 282 jenis legum berasosiasi dengan FMA (Wang and  Qiu,  2006).  Telah  diketahui  delapan  jenis  dari marga  Albizia  yang  berasosiasi  dan  responsive  tinggi terhadap  aplikasi  FMA  (Wang  and  Qiu,  2006). Albizia saponaria tidak termasuk dalam kedelapan jenis albizia tersebut.  Jenis  ini  termasuk  dalam  Sub  Famili Mimosoideae  (Leguminosae/Fabaceae)  (Sprent,  2009), yang  termasuk  jenis  lambat  tumbuh  ( Slow  growing species )  (Nielsen,  1992)  dan  potensial  untuk  kegiatan
rehabilitasi  hutan  dan  lahan  (Djogo,  1997),  tetapi  saat ini  sudah  mulai  langka  dan  jarang  ditemukan  di Indonesia (Pongoh et al., 2007).
Aplikasi  FMA  dalam  upaya  perbaikan  kualitas  dan pertumbuhan  tanaman  tersebut  perlu  dilakukan. Efektivitas FMA dalam meningkatkan pertumbuhan dan ketergantungan  tanaman  inang  terhadap  asosiasi  FMA sangat  dipengaruhi  oleh  kompatibilitas  antara  isolat FMA dengan tanaman inangnya (Van der Heijden et al., 2006;  Baar,  2008;  Estaun et  al., 2010).  Kompatibilitas kedua  simbion  ini  ditentukan  oleh    eksudat  akar  yang mempengaruhi  perkecambahan  spora,  dan  dalam beberapa  kasus  mempengaruhi  percabangan  hifa  dan kecepatan  memasuki  akar  sebagai  respon  untuk mendekati akar inang yang kompatibel, tetapi tidak pada tanaman non-inang (Harrison 1999). Peristiwa signaling ini  menunjukkan  mudah  tidaknya  suatu  inang  untuk berasosiasi  (Gadkar et  al. 2001;  Harrier    2001). Sedangkan kemampuan cendawan mikoriza meningkatkan  pertumbuhan  antara  lain  ditentukan  oleh genotip  FMA  dalam  kemampuannya  untuk  menyerap dan menghantar hara  ke  tanaman  inangnya  (Johnson et al . 1997).
Sebab  itu,  keberhasilan  usaha  inokulasi  antara  lain ditentukan  oleh  kemampuan  inokulan  fungi  untuk membentuk  asosiasi  mikoriza  secara  cepat  dan  luas serta  kemampuannya  untuk  tetap  bertahan  di  dalam tanah  (Johnson  dan  Pflegar  1992).  Oleh  karena  itu, pengujian  efektivitas  FMA  lokal  Sulawesi  yang diisiolasi  dari  bawah  tegakan  alami  kayu  kuku (Leguminosae)  terhadap  pertumbuhan  tanaman  legum A.  saponaria perlu  dilakukan.  Isolat  yang  kompatibel dapat mendukung simbiosis akan bekerja  secara  efektif (Widyati et  al., 2005;  Burhanuddin et  al., 2010).

## JURNAL SILVIKULTUR TROPIKA Vol. 02 No. 03 Desember 2011, Hal. 143 – 148 ISSN: 2086-8227
144 Faisal Danu Tuheteru et al.
Berdasarkan  gambaran  tersebut  di  atas  maka  tujuan penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui  efektivitas pengaruh  jenis  FMA  lokal  yang  diisolasi  dari  bawah tegakan  alami  kayu  kuku  terhadap  pertumbuhan A. saponaria serta ketergantungannya terhadap FMA.

## BAHAN DAN METODE
Pengecambahan  Benih. Benih Albizia  saponaria dikoleksi dari pohon induk di hutan kampus Universitas Haluoleo.  Perlakuan  awal  benih  adalah  pelukaan (scarifikasi)  kulit  bagian  microfil  benih A.  saponaria (Roshetko et al. 1997). Sebelum dikecambahkan, semua benih  diserilisasi  dengan  bayclin  5 tetes/50 ml aquades selama  5-10  menit.  Setelah  disterilisasi,  benih  dicuci beberapa  kali  dengan  air  sampai  bersih,  kemudian dikecambahkan pada bak plastik berukuran 40 x 30 x 15 cm yang berisi media pasir steril.
Pembuatan  Media  Semai. Media  semai  yang digunakan  adalah  kombinasi  antara  tanah  dan  pasir (2:1).  Jenis  tanah  yang  digunakan  adalah  podsolik merah  kuning  yang  diambil  di  sekitar  kampus Universitas  Haluoleo.  Media  semai  tersebut  dikering anginkan lalu disaring pada saringan yang berdiameter 5 mm agar diperoleh struktur tanah yang seragam.
Perbanyakan  dan  Pembuatan  Inokulum  FMA. Inokulum FAM yang digunakan adalah campuran empat jenis FMA ( Glomus sp. 1., Glomus sp.  2., Acaulospora 1  dan Acaulospora sp.  2)  yang  diisolasi  dari  tegakan alam  kayu  kuku  di  Cagar  Alam  Lamedai,  Kolaka. Isolat-isolat  FMA  tersebut  diperbanyak  dengan  teknik pot  kultur  (Brundrett et  al., 1996).  Inang  yang digunakan untuk perbanyakan FMA ini adalah Pueraria javanica .  Pot  plastik  berukuran  120  ml  diisi  dengan zeolit steril dan ditambahkan 5 g campuran empat jenis FMA.  Tanaman  inang P.  javanica ditanam  dalam  pot plastik tersebut sebanyak 5 kecambah, kemudia disusun pada rak-rak  besi  di  rumah  kaca  dan  dipelihara  selama 90 hari.
Inokulum FMA dibuat dengan cara mebiarkan kultur dalam  keadaan  kering  (tanpa  penyiraman)  selama  3 minggu  untuk  merangsang  sporulasi.  Bagian  atas tanaman inang (tunas) dipotong, sedangkan bagian akar bersama-sama  dengan  medianya  digunakan  sebagai inokulum (propagul) yang akan diuji efektivitasnya.
Inokulasi  FMA. Sebelum  inokulasi  FMA,  Polibag (ukuran  15  x  20  cm)  diisi media  tanah  sebanyak  2  kg. inokulasi FMA diberikan sesuai  perlakuan untuk setiap polybag,  yang  diletakan  dekat  akar  semai A.  saponaria yang  telah  berumur  2  minggu.  Semai  yang  tidak diinokulasi  dijadikan  sebagai  kontrol.  Semai  dipelihara dan disiram setiap hari pada kondisi rumah kaca Jurusan Kehutanan  Unhalu  dan  diamati  selama  3  bulan.  Gulma dan hama yang menggangu semai dipantau setiap hari.
Rancangan Penelitian. Penelitian ini menggunakan rancangan  acak  lengkap  (RAL)  dengan  3  ulangan. Perlakukan  yang  dicobakan  meliputi  :  tanpa  inokulasi FMA  (A);  inokulasi  10  g  FMA  per  polybag  (B)  dan inokulasi    20  g  FMA  per  polybag  (C).  Masing-masing perlakuan  pada  setiap  ulangan  terdiri  dari  10  tanaman
uji,  sehingga  secara  keseluruhan  terdapat  120  tanaman uji.
Peubah Yang Diamati. Pengamatan dilakukan pada minggu  ke  12  setelah  tanam  dengan  peubah  :  tinggi (cm),  diameter  (cm),  jumlah  daun  (helai),  berat  kering akar  (g),  berat  kering  pucuk  (g),  berat  kering  total  (g) dan  kolonisasi  akar  (%).  Teknik  pewarnaan  akar  dari Brundrett et  al., (1996)  digunakan  sebelum  dilakukan pengamatan kolonisasi akar.
% kolonisasi akar =
100% x diamati yang pandang bidang total a bermikoriz pandang bidang
 
Analisis Data. Hasil pengamatan pada setiap satuan amatan  dianalisis  dengan  sidik  ragam  (uji  F).  Apabila hasil  uji  menunjukkan  pengaruh  nyata  maka  dilakukan uji beda perlakuan menurut Least Significant Difference (LSD) pada tingkat signifikansi 95%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Hasil
Hasil  pengamatan  pengaruh  spesies  FMA  lokal Sulawesi  terhadap  persentase  kolonisasi  akar A. saponaria dan  pertumbuhan  tanaman  disajikan  pada Tabel  1.Tabel  1  menunjukkan  bahwa  perlakuan  FMA berbeda nyata dengan kontrol dan perlakuan 10 g FMA memiliki  kolonisasi  tertinggi  dibanding  FMA  20  g. Sedangkan  pada  perlakuan  tanpa  aplikasi  FMA (kontrol)  tidak  ditemukan  kolonisasi  FMA.  Tingginya kolonisasi  menunjukkan  bahwa  tanaman A.  saponaria sangat  rensponsif  dan  membutuhkan  FMA  dalam memperbaiki  pertumbuhannya.  Kolonisasi  FMA  lokal (10  dan  20  g)  signifikan  meningkatkan  pertumbuhan tinggi,  diameter  dan  jumlah  daun  serta  jumlah  bintil akar A.  saponaria umur  7  bulan  setelah  tanam dibanding kontrol. (Tabel 1).
Biomassa  tanaman  disajikan  pada  Tabel  2.  Tabel  2 menunjukkan  bahwa  berat  kering  pucuk,  akar  dan total tanaman A.  saponaria lebih  besar  pada  tanaman  yang diinokulasi FMA dibanding tidak diinokulasi. Peningkatan  berat  kering  tanaman  (total)  yang diinokulasi  10  dan  20  g  FMA terhadap  kontrol  sebesar 1109% dan 1188%.

## Pembahasan
Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa FMA lokal sangat  kompatibel  dan  berperan  penting  dalam peningkatan  pertumbuhan  awal  dan  perbaikan  nutrisi tanaman A. saponaria. Hal ini ditunjukkan oleh adanya peningkatan  pertumbuhan  tanaman  dan  bahan  kering (biomassa) A.  saponria yang  diinokulasi  FMA  lokal dibanding tidak  diinokulasi FMA. Peningkatan tersebut disebabkan karena adanya kolonisasi FMA yang baik di perakaran  tanaman  menyebabkan  aktivitas  fotosintesis meningkat,  sehingga  fotosintat  yang  dihasilkan  lebih banyak.  Fotosintat  ini  diubah  menjadi  ATP  dan NAD(P)H  melalui  serangkaian  proses  respirasi,  yang kemudian  digunakan  dalam  proses  pembelahan, pembesaran,  dan  pemanjangan  sel-sel  dan  sebagian
sebagai  kerangka  karbon  dalam  biomassa  tanaman (Lambers et al . 2008).
Peningkatan tinggi  bibit  juga  erat  kaitannya  dengan pembentukan  daun.  Daun  terbentuk  pada  buku-buku batang  sehingga  meningkatnya  tinggi  bibit  juga  diikuti oleh  bertambahnya  jumlah  daun.  Menurut  Byrne et  al . (2003)  bahwa  pertambahan  tinggi  tanaman  merupakan aktivitas  sel-sel  meristematik  pada  daerah paling  ujung suatu  pucuk,  dan  senantiasa  membelah  secara  lateral maupun basal menghasilkan jaringan yang terdeferensiasi secara terminal antara lain daun.
Bibit  tanaman A.  saponaria tanpa  inokulasi  FMA tidak  mampu  menghasilkan  daun  yang  lebih  banyak. Hal ini disebabkan karena unsur hara terutama N dan P yang ada di dalam media tidak cukup untuk mendukung pembentukan  organ  daun.  Sebab  menurut  Robertson (1999)  bahwa  defisiensi  N  akan  terlihat  pertama  kali pada  penurunan  ukuran  daun,  sedangkan  defisiensi fosfor sangat berpengaruh terhadap jumlah daun.
Aplikasi  FMA  lokal  juga  dapat  membantu pembentukan jumlah bintil  akar  tanaman A. saponaria hingga mencapai lebih  dari  1000 kali dibanding jumlah bintil pada  perlakuan tanpa bermikoriza. Meningkatnya jumlah bintil ini diduga terkait dengan adanya perbaikan serapan  fosfor    yang  dibutuhkan  rhizobium  (Sprent 2009;  Husna,  2010;  Javaid,  2010;  Muleta,  2010). Peningkatan  tersebut  dapat    mendukung  ketersediaan nitrogen  yang  juga  merupakan  unsur  makro  esensial yang sangat dibutuhkan bagi pertumbuhan dan biomassa tanaman.  Hasil  penelitian  ini  sejalan  dengan  beberapa peneltiian  pada  tanaman  tropika  diantaranya Acacia auriculiformis,  Acacia  mangium dan Albizia  falcataria (Dela Cruz et al., 1988), Acacia Senegal (Colonna et al., 1991), Parkia  biglobosa,  Tamarindus  indicus dan Zizyphus  mauritiana (Guissou et  al., 1998). Gliricidia sepium dan Leucaena  leucocephala (Lam.)  (Fagbola et al., 2001), Dalbergia  nigra (Santiago et  al., 2002)  dan Pericopsis mooniana THW (Iskandar, 2010). Pertumbuhan  dan  biomassa  tanaman A.  saponaria bermikoriza  yang  tinggi  pada  penelitian  ini  sangat dikaitkan  dengan  peran  FMA  dalam  penyerapan  unsur hara  terutama fosfat dan unsur hara lainnya (Marschner and  Dell,  1994;  Smith  and  Read,  2008),  air  (Auge, 2001)  serta  translokasi  karbohidrat  hasil  fotosintesis (Smith  and  Read,  2008).  Selain  peran  tersebut,  FMA juga  dapat  meningkatkan  ketahanan  tanaman  terhadap tekanan  biotik  dan  abiotik  (Ruiz-Lozano  and  Aroca, 2010),  stimulasi  nodulasi  (Husna,  2010;  Muleta,  2010) dan suplai zat pengatur tumbuh (Ludwig-Muller, 2010). Penelitian  ini  sejalan  dengan  beberapa  penelitian  yang terdahulu  pada  tanaman  legum,  diantaranya Erytrina berteroana (Cooperband et  al., 1994), Acacia  nilotica dan Albizzia  lebbeck (Sharma et  al 2001), Parkia biglobosa, Tamarindus indicus dan Zizyphus mauritiana (Guissou et  al., 1998), Gliricida  sepium (Jack)  dan Leucaena  leucocephala (Lam.)  (Fagbola et  al., 2001), Sesbania  aegyptiaca dan S.  grandiflora (Giri  and Mukerji  2004), Cassia  siamea (Giri et  al., 2005),  dan Pericopsis mooniana (Husna, 2010; Iskandar, 2010).

## KESIMPULAN
Kesimpulan  yang  dapat  diambil  dari  penelitian  ini adalah  :  (1)  Penggunaan  FMA  lokal  sangat  signifikan dalam  memicuh  pertumbuhan  awal  dan  biomassa tanaman A.  saponaria umur  7  bulan  setelah  tanam  di rumah  kaca  dan  (2)  Tanaman A.  saponaria memiliki tingkat ketergantungan yang tinggi terhadap FMA lokal, Disarankan  bahwa  untuk  memastikan  jenis  FMA  yang mana yang efektif meningktakan pertumbuhan tanaman dari  campuran  FMA  yang  diujikan  perlu  dilakukan penelitian lanjutan dengan aplikasi masing-masing jenis FMA.

## DAFTAR PUSTAKA
Alimuddin, LD. Peranan Cendawan Mikoriza Arbuskula  Dalam  Pembiakan  Jati  Muna  ( Tectona grandis Linn.f)  Melalui  Stek  Pucuk  [Tesis].  Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Augé  RM  2001  Water  Relations,  Drought  and
Vesicular-Arbuscular Mycorrhizal Symbiosis.
Mycorrhiza, 11:3–42.
Baar  J.  2008.  From  Production  to  Application  of Arbuscular  Mycorrhizal  Fungi  in  Agricultural Systems:  Requirements  and  Needs.  In  :  A.  Varma (Ed.) Mycorrhiza. Pp. 361-  373.  Springer,  New York.
Brundrett,  M.,  N,  Bougher.,  B.  Deu.,  T.  Grove.,
Majalaczuk,.  1996.  Working  with  Mycorrhizas  in Forestry  and  Agriculture.  Australian  Centre  for International Agriculture Research. Canberra.
Burhanuddin.,  S.  Kabirun.,  B.  Radjagukguk  and Sumardi.  2010.  Effect  of  AMF  Inoculation  on  the Growth  of Combretocarpus  rotundus (Miq.)  on  a Peat Soil from  Central Kalimantan (For Restoration Ez-Mega  Rice  Project  Central  Kalimantan). Biota , 15(1):63-71.
Byrne  ME,  Kidner  CA,  Martiensen  RA.  2003.  Plants cell  :  Divergent  Pathway  and  Common  Themes  In Shoots  And  Roots.  In  :  Surani  A,  Smith  A.  (Eds.). Current  opinion  in  genetics  and  development , 13:551-557.
Colonna  J.P.,  D.  Thoen.,  M.  Ducousso  and  S.  Badji. 1991.  Comparative  Effect  of Glomus  mosse and  P Fertilizer  on  Foliar  Mineral  Composition  of Acacia senegal Seedlings  Inoculated  with  Rhizobium. Mycorrhiza , 1:35-38.
Cooperband  L.R.,  R.  E.  J.  Boerner  ,  T.J.  Logan.  1994. Humid Tropical Leguminous Tree and Pasture Grass Responsiveness to Vesicular-Arbuscular
Mycorrhizal Infection. Mycorrhiza, 4:233-239
De  La  Cruz  RE,  Manalo  MQ,    Aggngan    NS  dan Tambalo JD. 1988.  Growth of Three Legume Trees Inoculated  With  VA  Mycorrhizal  Fungi  and Rhizobium. Plant and Soil, 108:111-115.
146 Faisal Danu Tuheteru et al.
Djogo  APY.  1997.  Use  of  Albizia  and  Paraserianthes Species  in  Small-scale  Farming  Systems  in Indonesia.  Proceedings  International  Workshop  on Albizia  and  Paraserianthes  Species.  Winrock International  Institute  for  Agricultural  Development United  Nations  Development  Program  Food  and Agriculture  Organization  Regional  Forest  Tree Improvement  Project  (FORTIP)  PICOP  Resources, Inc. Filipina. Pp: 27-37.
Estaún  V,  Cinta  Calvet,  and  Amèlia  Camprubí.  2010. Effect  of  Differences  Among  Crop  Species  and Cultivars  on the  Arbuscular  Mycorrhizal  Symbiosis [Chapter 13].  In : H. Koltai and Y. Kapulnik (Eds.). Arbuscular  Mycorrhizas:  Physiology  and  Function .
Pp. 279-295. Springer, New York.
Fagbola,  O.,  O.  Osonubi.,  K.  Mulongoy  and  S.A. Odunfa.  2001.  Effects  of  Drought  Stress    and Arbuscular Mycorrhiza on The Growth of Gliricidia sepium (Jacq).  Walp,  and Leucaena  leucocephala (Lam.). de Wit. in simulated eroded soil conditions. Mycorrhiza, 11:215–223
Gadkar V, David-Schwartz R, Talya K, Yoram K. 2001. Arbuscular  mycorrhizal  fungi  colonization.  Factors involved in host recognition. J.  Plant  Physiol. 127 : 1493-1499.
Ghosh  S  and  N.K.  Verma.  2006.  Growth  and Mycorrhizal Dependency of Acacia mangium Willd. Inoculated  with  Three  Vesicular  Arbuscular Mycorrhizal  Fungi  in  Lateritic  Soil. New  forests, 31:75-81
Giri  B  and  KG.  Mukerji  2004.  Mycorrhizal  Inoculant Alleviates  Salt  Stress  in Sesbania  aegyptiaca and Sesbania  grandiflora Under  Field  Conditions: Evidence  for  Reduced  Sodium  and  Improved Magnesium Uptake. Mycorrhiza, 14:307-312.
Giri  B.,  R.  Kapoor  and  K.  G.  Mukerji. 2005.  Effect  of The  Arbuscular  Mycorrhizae Glomus  fasciculatum and G.  macrocarpum on  The  Growth  and  Nutrient Content  of Cassia  siamea in  a  Semi-Arid  Indian Wasteland Soil. New Forests , 29:63–73
Guissou  T.,  A.M.  J-M  Ouadba.,  S.  Guinko  and  R. Duponnois.  1998.  Response  of Parkia  biglobosa , Tamarindus indica , Zizyphus mauritiana to Arbuscular  Mycorrhizal  Fungi  in  a  Phosphorus- Deficient  Sandy Soil.  Biology and Fertility  Soil,
26:194-198.
Harrier  LA.  2001.  The  arbuscular  mycorrhizal symbiosis  :  A  Molecular  Review  Of  The  Fungal Dimension. J. Experimental Botany , 52 469-478
Harrison  MJ,  N.  Pumplin,  F.J.  Breuillin,  Roslyn  D. Noar, and Hee-Jin Park. 2010. Phosphate Transporters  in  Arbuscular  Mycorrhizal  Symbiosis. [Chapter  6].  In  :  H.  Koltai  and  Y.  Kapulnik  (Eds.), Arbuscular  Mycorrhizas:  Physiology  and  Function . Pp. 117-167. Springer, New York.
Harrison  MJ.  1999.  Molecular  and  Cellular  Aspects  of The  Arbuscular  Mycorrhizal  Symbiosis.  Ann.  Rev.
J. Plant Physiol. Plant Mol. Biol , 50:89-361.
Heinemeyer A, Fitter AH. 2004. Impact of Temperature On  The  Arbuscular  Mycorrhizal  (AM)  Symbiosis  : Growth Responses  of The Plant  and its AM Fungal Partner. J. Experimental Botany , 55 (396):525-534.
Husna. 2010. Pertumbuhan Bibit Kayu Kuku ( Pericopsis mooniana THW) melalui  aplikasi Fungi Mikoriza  Arbuskula  (FMA)  dan  Ampas  Sagu  pada Media  Tanah  Bekas  Tambang  Nikel  [Tesis]. Pascasarjana Unhalu. Kendari
Iskandar  F.  2010.  Peningkatan  Kualitas  Bibit  Kayu Kuku (Pericopsis Mooniana Thwaites ) Yang Diberi Fungi  Mikoriza  Arbuskula  Dan  Tepung  Tulang [Skripsi].  Jurusan  Kehutanan  Fakultas  Pertanian Unhalu. Kendari.
Javaid,  A.  2010.  Role  of  Arbuscular  Mycorhizal  Fungi in  Nitrogen  Fixation  in  Legumes  [Chapter  17].  In  : M.S  Khan  et  al.  (Eds.). Microbes  for  Legume Improvement . Pp. 409-426. Springer, New York.
Johnson  NC,  Graham  JH,  Smith  FA.  1997.  Fuctioning of  mycorrhizal  associations  along  the  mutualism- parasitism continuum. J. News Phytol , 138: 575-585.
Johnson  NC,  Pflegar  FL.  1992.  Vesicular-arbuscular mycorrhizae  and  cultural  stress.  In :  (editor) Mycorrhizae  in  sustainable  agriculture .  American Crop      and  Soil  Science  Society.  ASA  Specl.  Publ. No. 54.
Lambers  H,  Chapin  III  FS,  Pons  TL.  2008.  Plant Physiological  Ecology,  Second  Edition.  Springer, New York.
Ludwig-Müller,  J.  2010.  Hormonal  Responses  in  Host Plants  Triggered  by  Arbuscular  Mycorrhizal  Fungi [Chapter  8].  In  :  H.  Koltai  and  Y.  Kapulnik  (Eds.).
Arbuscular  Mycorrhizas:  Physiology  and  Function . Pp. 169-190. Springer, New York.
Marschner,  H  and  Dell,  B.  1994.  Nutrient  Uptake  in Mycorrhizal Symbiosis. Plant Soil , 159:89-102.
Muleta  D.  2010.  Legume  response  to  arbuscular Mycorrhizal  fungi  inoculation  in  Sustainable Agriculture.  In  :  M.S  Khan  (Ed.) Microbes  for Legume  Improvement .  Pp.  293-323.  Springer,  New York.
Nichols KA. 2008. Indirect Contributions of AM Fungi and  Soil  Aggregation  to  Plant  Growth  and Protection.  In  :  Siddiqui  ZA,  Akhtar  MS,  Futai  K (Eds.), Mycorrhizae:  Sustainable  Agriculture  and Forestry . Pp. 177-194.Springer, New York.
Nielsen  LC.  1992.  Flora  Malesiana  Series  I- Spermatophyta Flowering Plants Volume 11, part 1. Foundation Flora Malesiana. Leiden.
Nwoko  H.,  Sanginga  N.  1999.  Dependence  of promiscuas  soybean  and  herbaceous  legumes  on arbuscular  mycorrhizal  fungi  and  their  response  to bradyrhizobial  inoculation  in  low  P  soils. J.  Appl. Sci. Ecol, 13:251-258.
Plenchette  C.,  J.A  Fortin  and  V.  Furlan.  1983.  Growth responses of several plant species to mycorrhizae in
a  soil  of  moderate  P-fertility.  I.  Mycorrhizal dependency  under  field  condition. Plant  soil,
70:199-209.
Pongoh  EJ,  Rymond  J.R,  Husein  H.B,  P.  Tarigan,  M. Mitova dan J.W. Blunt. Suatu Pentahidroksiflavanon dari  Akar Albizia  saponaria . Jurnal  Kimia Indonesia , 2 (1):13-16.
Pozo  MJ,  S.C.  Jung,  J.A.  López-Ráez,  and  C.  Azcón- Aguilar.  2010.  Impact  of  Arbuscular  Mycorrhizal Symbiosis  on  Plant  Response  to  Biotic  Stress:  The Role of Plant Defence Mechanisms [Chapter 9]. In : H.  Koltai  and  Y.  Kapulnik  (Eds.), Arbuscular Mycorrhizas:  Physiology  and  Function .    Pp.  193- 207. Springer, New York.
Rao  AV  and  Tak  R.  2001.  Influence  of  mycorrhizal fungi on the growth of different tree spcies and their nutrient  uptake  in  gypsum  mine  spoil  in  India. Applied Soil Ecology, 17:279-284.
Robertson  PN.  1999.  Plant  in  action  : Adaptation  in nature,  performance  in  cultivation .  Macmillan. Australia.
Roshetko, JM. 1997. Seed treatment for Albizia species. Proceedings  International  workshop  on  albizia  and paraserianthes species. Winrock International Institute  for  Agricultural  Development  United Nations Development Program Food and
Agriculture  Organization  Regional  Forest  Tree Improvement  Project  (FORTIP)  PICOP  Resources, Inc. Filipina. Hal: 38-43
Ruiz-Lozano JM and R. Aroca. 2010. Host Response to Osmotic  Stresses:  Stomatal  Behaviour  and  Water Use  Efficiency  of  Arbuscular  Mycorrhizal  Plants [Chapter 11].   In : H. Koltai and Y. Kapulnik (Eds.). Arbuscular  Mycorrhizas:  Physiology  and  Function . Pp. 239-256. Springer, New York.
Sharma  MP.,  NP.  Bhatia  and  A.  Adholeya.  2001. Mycorrhizal  dependency  and  growth  responses  of
Acacia  nilotica and Albizzia  lebbeck to  inoculation by  indigenous  AM  fungi  as  influenced  by  available soil  P  levels  in  a  semi-arid  Alfisol  wasteland. New Forests, 21: 89–104.
Santiago  GM.,  Q.  Garcia and  MR.  Scotti,  2002.  Effect of post-planting inoculation with Bradyrhizobium sp and  mycorrhizal  fungi  on  the  growth  of  Brazilian rosewood, Dalbergia nigra Allem. ex Benth., in two tropical soils. New Forests, 24: 15–25.
Smith SE, Read DJ. 2008. Mycorrhizal symbiosis. Third ed. Academic Press, New York.
Sprent,  JI.  2009.  Legume  Nodulation,  A  Global Perspective. Wiley-Blacwell, USA.
Turjaman  M.,  Y.  Tamai.,  E  Santoso.,  M.  Osaki  and  K.
Tawaraya.  2006.  Arbuscular  mycorrhizal  fungi increased  early  growth  of  two  nontimber  forest product  species Dyera  polyphylla and Aquilaria filarial under  greenhouse  conditions. Mycorrhiza , 16:459-464.
van der Heijden M.G.A., R. Streitwolf-Engel., R. Riedl., Sabine S., A. Neudecker., Kurt Ineichen., T. Boller., A.  Wiemken  and  I.R.  Sanders.  2006.    mycorrhizal contribution to plant productivity, plant nutrition and soil  structure  in  experimental  grassland. New Phytologist, 172 : 739–752
Wang B and Y.-L. Qiu. 2006. Phylogenetic distribution and  evolution  of  mycorrhizas in  land  plants. Mycorrhiza, 16: 299–363
Widyati, E., Irdika M., Cecep K., Iswandi A dan Erdy S. 2005.  Biodiversity  and  Effectiveness  of  Arbuscular Mycorrhizal  Fungi  (AMF)  Isolated  from  Ex-Coal Mining  area. Journal  of  Forest  and  Nature Conservation Research , II (3) : 295-302.
148 Faisal Danu Tuheteru et al.
Tabel 1.  Pengaruh  spesies  FMA  lokal  Sulawesi  Tenggara  terhadap  pertumbuhan A.  saponaria umur  7  bulan setelah tanam
Perlakuan Kolonisasi Tinggi (cm) % Diameter (mm) % Jumlah daun (helai) % Jumlah Bintil akar % Kontrol (A) 0  b 17,13  b 0,234  b 6,0  b 3,0  b 10 g FMA (B) 82  a 59,70  a 249 0,434  a 85 13,0  a 116 26,0  a 767 20 g FMA (C) 72  a 56,8  a 231 0,403  a 72 14,0  a 133 35,3  a 1077 Pr > F 0,0043 0.0001 0,0001 0,0184 0,0001
Keterangan :  -  Angka yang diikuti dengan huruf yang sama adalah tidak berbeda nyata pada taraf  5% menurut uji LSD
- % = persentase peningkatan terhadap kontrol
Tabel 2. Pengaruh spesies FMA Lokal Sulawesi Tenggara terhadap  biomassa  tanaman A. saponaria umur 7 bulan setelah tanam Perlakuan Berat Kering akar (g) % Berat Kering pucuk (g) % Berat Kering total (g) % Jumlah akar sekunder % 0 g FMA (A) 1,73  b 2,18  b 3,91  b 84     b 10 g FMA (B) 5,72  a 1037 6,52  a 1177 12,24  a 1109 671    a 699 20 g FMA (C) 5,06  a 1040 6,18  a 1188 11,74  a 1115 481    a 472 Pr > F 0,0002 0,0007 0,0001 0,1489
Keterangan : -  Angka yang diikuti dengan huruf yang sama adalah tidak berbeda nyata pada taraf  5% menurut uji LSD -  % = persentase peningkatan terhadap kontrol