ISSN : 2621-0665

## IDENTIFIKASI JAMUR ANTAGONIS DARI MEDIA LIMBAH JAMUR MERANG DALAM MENEKAN
Rhizctonia solani PENYEBAB PENYAKIT HAWAR PELEPAH PADI ( Oryza sativa L.)
IDENTIFICATION OF ANTAGONIST FUNGI FROM STRAW MUSHROOM WASTE MEDIA IN SUPPRESSING Rhizoctonia solani THE CAUSE OF RICE SHELF BLOOD DISEASE (Oryza sativa L.)
Ahmad Daffa Miftahussurur * , Satriyo Restu Adhi, Sugiarto
Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Singaperbangsa Karawang, Jl. H.S. Ronggo Waluyo, Puserjaya, Telukjambe Timur, Karawang, Jawa Barat 41361, Indonesia
Email korespondensi : satriyo.restu@faperta.unsika.ac.id

## ABSTRAK
Salah satu penyakit utama padi adalah hawar pelapah yang disebabkan oleh jamur Rhizoctonia solani. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengisolasi jamur yang berasal dari limbah media jamur merang yang memiliki sifat antagonis terhadap jamur R. solani. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Bioteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Singaperbangsa Karawang. Tahapan penelitian ini terdiri dari : (1) isolasi dan identifikasi jamur antagonis asal limbah media jamur merang, (2) uji antagonisme secara in-vitro dengan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) diulang tiga kali, (3) uji patogenisitas jamur antagonis terhadap perkecambahan benih padi. Dari hasil percobaan diperoleh  9  isolat jamur antagonis, terdentifikasi 7 genus jamur terdiri dari 4 genus Trichoderma sp. dan 3 genus Aspergillus sp. Berdasarkan Hasil AUCGC dan persentase penghambatan hasil menunjukkan bahwa beberapa jamur asal limbah media jamur merang memiliki kemampuan antagonis dan menghambat R. solani . Perlakuan JMA2 ( Trichoderma sp.) dan R. solani pada uji antagonisme memberikan nilai AUCGC terkecil sebesar 29,38 dan persentase penghambatan terbesar hingga 31,22%.
Kata kunci: : Padi, jamur antagonis, jamur merang, penyakit moler, Rhizoctonia solani sp .

## ABSTRACT
One of the main diseases of rice is sheath blight caused by the fungus Rhizoctonia solani. The aim of this research is to isolate fungi originating from straw mushroom media waste which have antagonistic properties to the fungus R. solani. The research was carried out at the Biotechnology Laboratory, Faculty of Agriculture, Singaperbangsa University Karawang. The stages of this research consisted of: (1) isolation and identification of antagonist fungi from straw mushroom media waste, (2) in-vitro antagonism test using a Completely Randomized Design (CRD) repeated three times, (3) pathogenicity test of antagonist fungi  on  germination  rice  seeds.  From  the  experimental  results,  9  isolates  of  antagonistic  fungi  were obtained, 7 fungal genera were identified, consisting of 4 genera Trichoderma sp. and 3 genera Aspergillus sp. Based on the AUCGC results and the percentage of inhibition, the results show that several fungi from straw  mushroom media waste have the ability to antagonize and inhibit R. solani. Treatment of JMA2 (Trichoderma sp.) and R. solani in the antagonism test gave the smallest AUCGC value of 29.38 and the largest inhibition percentage of up to 31.22%.
.
Keywords: paddy, antagonistic fungi, straw mushroom, moler disease, Rhizoctonia solani sp.
Agroradix Vol. 7 No.2 (Juli 2024) ISSN : 2621-0665

## PENDAHULUAN
Padi merupakan komoditas pangan paling fundamental  dan  penting  bagi  sektor  pangan  di Indonesia.  Padi  sebagai  sumber  energi  dan karbohidrat  bagi  masyarakat  Indonesia.  Hasil Survei KSA menunjukkan bahwa luas panen padi pada  tahun  2021  turun  sebanyak  10,41  juta hektar,  atau  2,30  persen,  sebanyak  245,47  ribu hektar  dibandingkan  tahun  2020.  (Isnaeni et al .,2021)
Hawar  pelepah Rhizoctonia  solani adalah salah  satu  penyebab  penurunan  produktivitas dan  kualitas  padi  di  tingkat  nasional  dan internasional.  (Reddy M, 2014). Kehilangan hasil terkhusus  di  Indonesia  akibat  hawar  pelepah sebesar  20%,  dan  pada  keparahan  penyakit  di atas  25%  kehilangan  hasil  bertambah  4%  untuk tiap kenaikan 10% keparahan (Nuryanto, 2018).
Dalam  sistem  produksi  padi  sawah, penyakit  hawar  pelepah  menjadi  masalah  yang signifikan,  terutama  di  daerah  pertanian  padi intensif. Oleh karena itu, untuk mengetahui cara mengendalikan hawar  pelepah, elemen epidemi yang  memengaruhi  pertumbuhannya  harus dilakukan analisis. (Nuryanto, 2018).
Pengendalian  penyakit  hawar  pelepah dapat  dilakukan  dengan  penggunaan  fungisida sintetik.  Namun,  penggunaan  fungisida  yang tidak  sesuai  atau  berlebih  mengakibatkan terjadinya  resistensi,  musnahnya  beberapa organisme yang bermanfaat, dan mengakibatkan polusi  terhadap  lingkungan  (Fajarfika,  2021). Maka  dari  itu  diperlukan  alternatif  lain  untuk mengendalikan R.  solani ,  dengan  meminimalisir penggunaan  fungisisda  sintetik  dengan  cara pengaplikasian  jamur  antagonis.  Penelitian
Soenartiningsih
(2010) menunjukkan kemampuan Trichoderma dalam  menekan R. solani lebih dari 50%.
Beberapa jamur antagonis dapat ditemukan  pada  limbah  media  jamur  konsumsi terkhusus  jenis  jamur  merang.  Jamur  antagonis hasil  isolasi  dari  limbah  baglog  biasanya  adalah Trichoderma sp., Fusarium sp., Aspergillus sp. dan
Mucor sp. (Rathoure, 2015). Hal itu menunjukkan bahwa  limbah  media  jamur  seperti  baglog memungkinkan  dapat  dimanfaatkan  sebagai pengendali R. solani patogen .
Maka dari itu tujuan dari penelitian ini ialah untuk  mendapatkan  isolat  dari  limbah  jamur merang  yang  memiliki  kemampuan  antagonis dalam menekan R. solani, yang selanjutnya dapat dijadikan  salah  satu  informasi  alternatif pengendalian penyakit rebah kecambah menggunakan  agensia  hayati  yang  ramah lingkungan.

## METODE PENELITIAN
Tempat pelaksanaan percobaan identifikasi  jamur  antagonis,  uji  antagonisme dilakukan di Laboratorium Bioteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Singaperbangsa Karawang.
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  Mei hingga bulan Agustus 2023. Pengujian antagonisme jamur antagonis asal media limbah jamur  merang  dalam  menekan R.  solani penyebab penyakit hawar pelepah pada tanaman padi dilaksanakan selama 7 hari pengamatan.
Persiapan  isolasi  jamur  antagonis  dari limbah  media  jamur  merang  diambil  dari produsen  jamur  merang  yang  berlokasi  di Pasirmulya,  Majalaya,  Karawang,  Jawa  Barat, Indonesia – 41361. Limbah media jamur merang yang  digunakan  yaitu  limbah  media  jamur merang  yang  sudah  berumur  30  hari  setelah panen  dengan  komposisi  limbah  terdiri  dari dedak, serbuk gergaji, dan kapur.
Persiapan  alat  dan  ruangan  dilakukan dengan  melalui  tahap  sterilisasi  alat  dengan melakukan  pembungkusan  dengan  cara  dicuci steril terlebuh dahulu dan dibungkusakan dengan sampul coklat bagian luar pada semua peralatan agar alat tidak mudah rusak terkena panas secara langsung.Setelah  pembungkusan  dimasukkan  ke dalam autoclave dengan  suhu  121⁰  C  dengan tekanan 2 atm selama 15 menit. Alat-alat yang di sterilisasi meliputi cawan Petri, gelas ukur, tabung reaksi,  dan  labu  erlenmeyer  yang  sudah  di  cuci
Agroradix Vol. 7 No.2 (Juli 2024) ISSN : 2621-0665
keringkan.  Kemudian  pembuatan  media  PDA untuk  menumbuhkan  jamur  antagonis  sebelum isolasi dan purifikasi.
Pengisolasian  jamur  dilakukan  dengan mengikuti  metode Hastuti (2009), yaitu menggunakan  10  g sample limbah  media  jamur merang  untuk  disuspensikan  dalam  100  ml akuades  steril  dan  dihomogenkan  selama  20 menit  menggunakan  vortex.  Selanjutnya,  1  ml suspensi  dipindahkan  ke  dalam  9  ml  akuades steril  dalam  tabung  reaksi  dan  dikocok  hingga homogen (pengenceran tahap I atau 10 -1 ). Proses ini  diulang  sampai  pengenceran  10 -4 .  Dengan menggunakan pipet steril, hasil pengenceran 10 -1 hingga  10 -4 masing-masing  diambil  dalam  1  ml dan  dimasukkan  ke  dalam  cawan  Petri  secara aseptik. Kemudian, media Potato Dextrose  Agar (PDA)  ditambahkan,  dan  cawan  Petri  diinkubasi selama  5  hingga  7  hari  pada  suhu  kamar  28°  C hingga 30° C.
Setelah  itu  dilakukan  pemurnian  pada setiap  koloni  jamur  yang  dianggap  berbeda berdasarkan morfologi, warna, dan bentuk yang terlihat dalam cawan petri. Masing-masing koloni yang  berbeda  diambil  menggunakan  ose, kemudian ditumbuhkan kembali ke dalam cawan Petri  berisi  media  PDA  untuk  mengidentifikasi mereka  secara  makroskopis  dan  mikroskopis. Dengan  bantuan  buku  Illustrated  Genera  of Imperfect  Fungi,  yang  ditulis  oleh  Barnett  dan Hunter  (1987),  morfologi  koloni  dan  hasil pengamatan mikroskopis dibandingkan.
Bentuk  dan  warna  isolat  diamati  untuk mengamati  morfologi  koloni  pada  isolat  yang berusia tujuh hari. Pengamatan secara mikroskopis  dilakukan  melalui  pengamatan  di bawah mikroskop dengan melihat morfologi dari jamur secara mikroskopis.
Sebelum  melakukan  uji  antagonisme dengan metode dual culture dilakukan peremajaan  Isolat  jamur  patogen R.  solani diperoleh dari koleksi Laboratorium Bioteknologi Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Padjajaran  Jatinangor,  Kabupaten  Sumedang, Provinsi Jawa Barat 45363.
Isolat R.  solani dilakukan  peremajaan dengan  menumbuhkan  kembali  isolat  di  media PDA  pada  cawan  petri,  melalui  metode  cawan gores dan selanjutnya diinkubasi pada suhu ruang 37˚  C  selama  24 -48  jam  hingga  menghasilkan isolat  patogen  Rhizoctonia  solani  yang  benar- benar murni.
Uji  antagonisme  dilakukan  menggunakan metode  biakan  ganda  ( dual  culture )  yang  mana dilakukan  secara in-vitro. Metode dual  culture untuk mengetahui kemampuan jamur antagonis asal  media  limbah  jamur  merang  untuk menghambat R. solani.
Cara  untuk  menguji  sifat  antagonis  isolat jamur antagonis dari media limbah jamur merang adalah dengan meletakkan isolat jamur antagonis secara  bersamaan  dengan  isolat R.  solani pada cawan Petri  berdiameter 9 cm yang telah diberi anti bakteri (sebutkan menggunakan apa). Untuk perlakuan kontrol, hanya jamur R. solani patogen yang diinokulasi pada media PDA, tetapi tidak ada isolat jamur antagonis limbah media. Setelah itu, diinkubasi  pada  suhu  kamar  (28 – 30°  C)  sampai patogen tumbuh mengisi cawan Petri (Berlian et al ., 2016).
Percobaan pada uji antagonisme secara in- vitro menggunakan rancangan percobaan lengkap  (RAL)  dengan  perlakuan  isolat  jamur terseleksi dengan jamur patogen dan ditambahkan  perlakuan  kontrol  (tanpa  isolat jamur  antagonis).  Pengukuran  jari-jari  koloni patogen ke arah isolat jamur yang diuji dilakukan pengamatan  setiap  hari  sampai  memenuhi medium  dalam  cawan  Petri.  Variabel  yang diamati dalam percobaan yaitu mengukur jari-jari pertumbuhan  koloni  patogen.  Daya  hambat jamur  diukur  dengan  menggunakan  rumus (Rachmawati, 2017)sebagai berikut
AUCGC =   ∑ {( 𝑌 𝑖 +   𝑌 𝑖+1 2 )} 𝑛−1 𝑖 (𝑡 𝑖+1 − 𝑡 𝑖 )
Keterangan :
Y = Jari-jari koloni pada saat i Y (i+1) = Jari-jari koloni pada saat t+1 t  = Beda waktu antar pengamatan.
Agroradix Vol. 7 No.2 (Juli 2024) ISSN : 2621-0665
Data  nilai  AUCGC  ( Area  Under  Colony Growth )  yang  diperoleh  dianalisis menggunakan analisis ragam (ANOVA) menggunakan SPSS versi 21.0.  Jika  hasil  uji  yang  diperoleh  berpengaruh nyata  maka  dilakukan  uji  lanjut  dengan  uji Duncan pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHAN
Karakteristik  dan  identifikasi  jamur  asal limbah  media  jamur  merang  hasil  isolasi  dan purifikasi  menghasilkan  9  isolat  genus  jamur antagonis.
Tabel 1. Hasil isolasi dan purifikasi jamur antagonis asal limbah media jamur merang Kode Perlakuan Jamur Antagonis Kontrol - JM1 Trichoderma sp1 JM2 Trichoderma sp2 JM3 Aspergillus sp1 JM4 Tidak teridentifikasi JM5 Trichoderma sp3 JM6 Aspergillus sp2 JM7 Tidak teridentifikasi JM8 Aspergillus sp3 JM9 Trichoderma sp4
Identifikasi  dilakukan  dengan  mengamati karakteristik secara makroskopis dan mikroskopis jamur antagonis yang tumbuh pada media PDA, dibantu  dengan  menggunakan  buku Illustrated Genera  of  Imperfect  Fungi (Barnet  &  Hunter, 1987). Hasil isolasi dan identifikasi serta purifikasi jamur  antagonis  pada  tabel  diatas  terdapat sejumlah  hasil  yang  beragam  dari  identifikasi jamur antagonis di daerah Pasirmulya, Majalaya, Karawang, Jawa Barat.
Dalam  pengamatan  yang  dilakukan, didapat  9  isolat  jamur  berhasil  diamati, menampilkan variasi 7 jenis jamur diantaranya 4 genus Trichoderma sp. serta  3 lainnya termasuk kedalam genus Aspergillus sp. yang menunjukkan karakteristik  morfologi  yang  berbeda  seperti pada gambar 1.
Gambar 1. Hasil identifikasi jamur antagonis (A) Isolat Trichoderma sp  1  secara  makroskopis  (B) Trichoderma sp  1  secara  mikroskopis  (C) Isolat Aspergillus sp 1 secara makroskopis (D) Aspergillus sp 1 secara mikroskopis.

## Uji Antagonisme
Dari  sembilan  perlakuan  jamur  antagonis, perlakuan JM3 (Trichoderma sp 3) paling banyak menghambat  pertumbuhan  Rhizoctonia  solani dan lebih efektif daripada perlakuan kontrol.Tingginya  nilai  AUCGC  menentukan seberapa  baik  pertumbuhan  patogen  yaitu Rhizoctonia solani (Adhi & Suganda, 2020) . Nilai AUCGC tertinggi yaitu pada perlakuan tanpa  isolat  limbah  media  (kontrol),  berbeda nyata dengan perlakuan JMA1, JMA9, JMA5, dan JMA2,  namun  tidak  berbeda  nyata  dengan perlakuan JMA3, JMA4, JMA7, JMA6, dan JMA8. Temuan  ini  menunjukkan  bahwa  inokulasi dengan  isolat  limbah  media  jamur  merang memberikan  dampak  yang  beragam  terhadap pertumbuhan  isolat R.  solani ,  dengan  beberapa isolat  tampaknya  memiliki  efek  menghambat atau merangsang pertumbuhan mikroorganisme tersebut.
Tabel  2.  Rata-rata  nilai  AUCGC  jamur  antagonis  asal limbah  media  jamur  merang  terhadap jamur Rhizoctonia solani .
Keterangan:  Berdasarkan  Uji  Lanjut  DMRT  taraf  5%, huruf  yang  sama  pada  satu  koloni  nilai AUCGC menunjukkan hasil yang berbeda nyata untuk setiap perlakuan.
Menurut  penelitian  Mishra et  al .,(2020) Trichoderma dapat menghambat R. solani secara efektif  dengan  persentase  penghambatan maksimum  masing-masing  71,48%,  67,28%  dan 63,89%. Hal ini sesuai dengan temuan penelitian yang menunjukkan bahwa pertumbuhan R. solani dengan  perlakuannya  bersama Trichoderma menunjukan nilai pertumbuhan atau AUCGC yang lebih besar dibanding jamur antagonis yang lain.
Hasil pengujian menunjukkan nilai AUCGC yang  terendah  terdapat  pada  perlakuan  JMA2 ( Trichoderma sp.).  Hal  tersebut  menandakan bahwa isolat jamur JMA2 memiliki pengaruh yang
paling  tinggi  terhadap  pertumbuhan R.  solani. Sementara itu nilai AUCGC yang mendekati nilai AUCGC  kontrol  yaitu  perlakuan  JMA3,  JMA4, JMA7,  dan  JMA6  menandakan  bahwa  isolat tersebut  memiliki  pengaruh  yang  kecil  dalam memengaruhi pertumbuhan R. solani dibandingkan  perlakuan  isolat  limbah  media jamur merang lainnya terhadap pertumbuhan R. solani.
Persamaan  nilai  AUCGC  antara  perlakuan isolat  dengan  genus  sama  yaitu  pada  genus Trichoderma sp., di mana nilai AUCGC perlakuan JMA1, JMA2, JMA5, dan JMA9 memiliki nilai yang cenderung sama hal ini diduga karena kemiripan karakteristik  biologis  atau  mekanisme  aksi  yang dimiliki  oleh  isolat-isolat  tersebut  juga  dapat berkontribusi pada kesamaan nilai AUCGC.
Perbedaan  nilai  AUCGC  antara  perlakuan isolat  dengan  genus  sama  yaitu  pada  genus Aspergillus sp.,  di  mana  nilai  AUCGC  perlakuan JMA3  berbeda  nyata  dengan  JMA6  dan  JMA8 diduga  karena  perbedaan  dalam  aktivitas antagonistik, di mana isolat-isolat Aspergillus sp. pada perlakuan yang berbeda mungkin menunjukkan  tingkat  aktivitas  yang  bervariasi terhadap pertumbuhan patogen adanya perbedaan  spesies  dan  atau  kemampuan  yang berbeda pada setiap perlakuan.
Menurut  Rizali  &  Sari  (2023),  data  daya hambat  yang  berbeda-beda  pada  setiap  spesies terjadi  dikarenakan  perbedaan  genetik  yang mengakibatkan  respons  dari  setiap  spesies bahkan  setiap  ulangan  yang  menunjukkan  daya hambat  yang  berbeda-beda.  Perbedaan  ini dipengaruhi oleh jenis, jumlah, dan kualitas dari antibiotik (Rizali & Sari, 2023).
Perlakuan Antagonis Patogen AUCGC Kontrol - R.solani 42,72 a JM1 Trichoderma sp1 R.solani 35,70 d JM2 Trichoderma sp2 R.solani 29,38 d JM3 Aspergillus sp1 R.solani 41,84 a JM4 Tidak teridentifikasi R.solani 41,74 ab JM5 Trichoderma sp3 R.solani 32,78 d JM6 Aspergillus sp2 R.solani 40,28 b JM7 Tidak teridentifikasi R.solani 41,73 b JM8 Aspergillus sp3 R.solani 37,55 c JM9 Trichoderma sp4 R.solani 33,14 d KK (%) 6.37
Gambar 2. Pertumbuhan jamur Rhizoctonia solani pada medium PDA bersama berbagai isolat jamur antagonis asal limbah media jamur merang selama tujuh hari
Pertumbuhan  koloni Rhizoctonia  solani yang ditumbuhkan bersama berbagai jamur asal limbah media dapat dilihat pada Gambar 2. Grafik pertumbuhan  koloni  tersebut  merupakan  data dari  hasil  pengamatan  pertumbuhan  diameter Rhizoctonia solani selama tujuh hari. Pertumbuhan Rhizoctonia  solani pada  masing- masing perlakuan tidak mengalami pertumbuhan yang  signifikan  mulai  hari  keempat  hingga  hari ketujuh pengamatan.
Sementara  itu,  beberapa  koloni  lainnya tampaknya tetap tidak berubah atau stuck pada ukuran yang sama dari hari keempat hingga hari ketujuh. Sementara itu, beberapa koloni lainnya tampaknya  ada  yang  mengalami  penurunan diameter  pada  hari  kedua  hingga  hari  keempat. Hal  itu  diduga  karena  jamur  antagonis  berhasil mengurangi diameter Rhizoctonia solani merujuk pada penelitian Yadav et al .,(2021), bahwa jamur antagonis  mempunyai  kemampuan  dalam memperkecil  diameter  patogen  pada  uji antagonisme dual culture .
Pengukuran  kemampuan  isolat  limbah media jamur merang dalam menekan Rhizoctonia solani  dapat  dilihat  pada  uji  antagonis menggunakan  metode  dual  culture  .Hasil pengujian  menunjukkan  dari  9  isolat  limbah media,  terdapat  5  isolat  (JMA1,  JMA2,  JMA5,
JMA8,  dan  JMA9)  yang  memiliki  kemampuan menghambat  pertumbuhan Rhizoctonia  solani secara  in  vitro  yang  lebih  besar  dengan  nilai AUCGC  yang  kecil  serta  berbeda  nyata  dengan kontrol  selain  itu  pada  4  isolat  lainnya penghambatan  yang  terjadi  antara  4  isolat tersebut  tidak  menunjukkan  adanya  perbedaan yang nyata dengan kontrol sehingga penghambatan dapat dinyatakan tidak signifikan atau nahkan tidak menghambat.
Tingkat  penghambatan  yang  bervariasi oleh isolat limbah media jamur merang terhadap pertumbuhan  koloni R.  solani muncul  sebagai hasil  dari  perbedaan  dalam  kemampuan  dan mekanisme antagonis yang dimiliki oleh masing- masing  jamur  tersebut  dalam  menekan  isolat patogen. Mekanisme antagonisme yang mungkin terjadi  mencakup  kompetisi,  antibiosis,  dan parasitisme  (Nehra  et  al.,  2021).  Interaksi antagonisme  isolat  limbah  media  jamur  merang dapat  diobservasi  secara  makroskopis  dan mikroskopis.
3,00 8,00 1 2 3 4 5 6 7 Pertu m b u h an Dia m eter Pa to ge n (cm ) Hari Setelah Inokulasi
Kontrol JMB1 JMB2 JMB3 JMB4 JMB5 JMB6 JMB7 JMB8 JMB9
Gambar 3. Uji Dual culture antara jamur antagonis asal limbah  media  jamur  tiram  dengan  isolat jamur Rhizoctonia solani
Pada tingkat makroskopis, terlihat bahwa 5 isolat limbah media jamur merang menunjukkan interaksi  antagonisme  yang  jelas  terhadap Rhizoctonia solani . Interaksi ini berupa kompetisi antagonisme  yang  tampak  pada  isolat  JMA1, JMA2, JMA5, JMA8, dan JMA9. Dalam konteks ini, ketujuh isolat tersebut memainkan peran penting dalam menghambat pertumbuhan dan perkembangan  patogen,  memberikan  wawasan lebih  lanjut  tentang  potensi  pengendalian biologis  menggunakan  jamur  merang  terhadap Rhizoctonia solani dalam  konteks  pertanian. Ketujuh  isolat  yang  menunjukkan  adanya interaksi antagonis tersebut  4 berasal dari genus Trichoderma sp dan 3 dari genus Aspergillus sp Interaksi  antagonisme  yang  ditunjukkan oleh Trichoderma sp. terhadap Rhizoctonia solani terjadi  mekanisme  kompetisi  ruang  dan  nutrisi. Kompetisi  terjadi  dikarenakan Trichoderma sp. merupakan jamur yang tumbuh sangat cepat dan mampu mengolonisasi cawan Petri dengan cepat pula,  sehingga  pertumbuhan Rhizoctonia  solani menjadi tertekan . Menurut Rizali & Sari (2023), mekanisme  antagonisme  kompetisi  ditunjukkan dengan dua mikroorganisme atau lebih mempersaingkan ruang, nutrisi, dan oksigen.
Proses  penghambatan Trichoderma sp. terhadap  patogen  dalam  media  PDA  diduga karena  adanya  mekanisme  hiper-parasitisme, adanya senyawa antibiotik yang dilepaskan, serta kemampuan  yang  baik  dalam  berkompetisi secara  ruang. Trichoderma sp.  dikenal  sangat antagonis  dalam  menghentikan  pertumbuhan jamur  patogen  dengan  menghasilkan  senyawa
antibiotik  yang  berfungsi  sebagai  anti  jamur (Alfizar & Susanti, 2013).
Masuknya  senyawa  metabolit  sekunder yang  bersifat  antibiotik  ke  dalam  sel  jamur patogen  menyebabkan  pembengkakan  hifa Rhizoctonia  solani .  Trichoderma  adalah  agens biokontrol yang menghasilkan metabolit sekunder seperti gliotoksin. Gliotoksin berbahaya bagi Rhizoctonia  solani dan  beberapa  patogen tanaman lainnya(Nawrocka et al., 2018).
Selain itu adanya zona hambat menunjukan mekanisme antibiosis yang ditunjukkan  dengan  perubahan  warna  miselium Rhizoctonia  solani menjadi  kuning  kecoklatan (melanisasi)  pada  ujung  koloni  atau  ditengah petri  seperti  garis  pemisah  antara  2  jamur (Gambar  3).  Hal  ini  menandakan  bahwa Rhizoctonia solani menghasilkan melanin sebagai bagian  dari  responsnya  terhadap  mekanisme antibiosis(Chen et al ., 2015)
3  bahwa  4  isolat  limbah  media  jamur merang  memperlihatkan adanya interaksi antagonisme  yang  rendah  terhadap  Rhizoctonia solaniyaitu  pada  isolat  JMA3  ( Aspergillus sp.), JMA4  (Belum  teridentifikasi),  JMA6  ( Aspergillus sp.)  dan  JMA  7  (Belum  teridentifikasi).  Hasil analisis  menunjukkan  keempat  isolat  tersebut tidak berbeda nyata dengan kontrol, yang artinya keempat  Isolat  ini  tidak  dapat  menghentikan perkembangan Rhizoctonia solani . .

## KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  percobaan  yang  telah dilakukan  didapatkan  9  isolat  jamur  antagonis asal limbah media jamur merang. 4 di antaranya termasuk kedalam genus Trichoderma sp. dan 3 diantaranya termasuk kedalam genus Aspergillus sp.  Hasil  uji dual  culture menunjukkan  5  isolat tersebut  mampu  menghambat  pertumbuhan Rhizoctonia solani .
Agroradix Vol. 7 No.2 (Juli 2024) ISSN : 2621-0665

## DAFTAR PUSTAKA
Adhi,  S.  R.,  &  Suganda,  T. (2020).  Potensi  jamur rizosfer  bawang  merah  dalam  menekan
Fusarium oxysporum f.sp. cepae, penyebab penyakit  busuk  umbi  bawang  merah.
Kultivasi , 19 (1), 1015. https://doi.org/10.24198/kultivasi.v19i1.22 877
Alfizar,  M., &  Susanti, D.  F.  (2013).  Kemampuan Antagonis  Trichoderma  sp.  Terhadap Beberapa  Jamur  patogen  In  Vitro. J. Floratek , 8 , 45 – 51.
Berlian,  I.,  Anarqi,  S.,  &  Pudjihartati,  E.  (2016). Isolasi, identifikasi, dan antagonisme in vitro isolat  Trichoderma  spp.  asal  kebun  karet, Blimbing,  Pekalongan,  Jawa  Tengah. Jurnal Penelitian Karet , 34 (2), 201 – 212.
Chen,  J.,  Wang,  C.,  Shu,  C.,  Zhu,  M.,  &  Zhou,  E. (2015).  Isolation  and  characterization  of  a melanin from Rhizoctonia solani, the causal agent  of  rice  sheath  blight. European Journal of Plant Pathology , 142 , 281 – 290.
Fajarfika,  R.  (2021).  Potensi Trichoderma  Spp. Dalam  Pengendalian  Penyakit  Hawar Pelepah Padi (Rhizoctonia Solani) Secara In Vivo. Jurnal  Agrotek  Tropika , 9 (1),  1. https://doi.org/10.23960/jat.v9i1.4373
Hastuti, R. B. (2009). Isolasi dan identifikasi jamur indigenous rhizosfer tanaman kentang dari lahan  pertanian  kentang  organik  di  Desa Pakis,  Magelang. Bioma:  Berkala  Ilmiah Biologi , 11 (2), 45 – 53.
Isnaeni Nur Khasanah, S. T. S., & Karina Astuti, S.
(2022). Luas  Panen  dan  Produksi  Padi  di Indonesia 2021 .
Mishra, D., Rajput, R. S., Zaidi, N. W., & Singh, H. B. (2020). Sheath blight and drought stress management in rice (Oryza sativa) through Trichoderma  spp. Indian  Phytopathology ,
73 (1), 71 – 77. https://doi.org/10.1007/s42360-019-
00189-8
Nawrocka,  J.,  Małolepsza,  U.,  Szymczak,  K.,  & Szczech,  M.  (2018).  Involvement  of metabolic
components, volatile compounds,  PR  proteins,  and  mechanical strengthening  in  multilayer  protection  of
cucumber plants against Rhizoctonia solani activated by Trichoderma atroviride TRS25.
Protoplasma , 255 (1), 359 – 373. https://doi.org/10.1007/s00709-017-1157-
1
Nehra, S., Gothwal, R. K., Varshney, A. K., Solanki, P. S., Chandra, S., Meena, P., Trivedi, P. C., & Ghosh,  P.  (2021).  Bio-management  of Fusarium spp. associated with fruit crops. In Fungi Bio-Prospects in Sustainable Agriculture, Environment and Nano- Technology (pp. 475 – 505). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12- 821394-0.00019-6
Nuryanto,  B.  (2018).  Penyakit  Hawar  Pelepah (Rhizoctonia  solani)  pada  Padi  dan  Taktik Pengelolaannya. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia , 21 (2), 63. https://doi.org/10.22146/jpti.22494
Rachmawati, A. (2017). Skrining Jamur Antagonis Terhadap  Jamur  Xylaria  Sp.  Penyebab Penyakit  Lapuk  Akar  Dan  Pangkal  Batang Tebu (pp. 15 – 20).
Reddy MS, Y. (2014). Rice Sheath Blight: A Review of  Disease  and  Pathogen  Management Approaches. Journal  of  Plant  Pathology  & Microbiology ,
05 (04).
https://doi.org/10.4172/2157- 7471.1000241
Rizali,  A.,  &  Sari,  N.  (2023).  Daya  Antagonisme Trichoderma  Spp.  Terhadap  Patogen Fusarium Oxysporum Fo Penyebab Penyakit Layu  Pada  Bawang  Merah. Prosiding Seminar Nasional Lingkungan Lahan Basah ,
8 (2), 204 – 210.
Soenartiningsih. (2010). Prosiding Pekan Serealia
Nasional. Efektivitas  Beberapa  Cendawan Antagonis Dalam Menghambat Perkembangan Cendawan Rhizoctonia Solani Pada Jagung Secara Invitr , 1 – 7.
Yadav, D. R., Adhikari, M., Kim, S. W., Kim, H. S., & Lee,  Y.  S.  (2021).  Suppression  of  Fusarium Wilt  Caused  by  Fusarium  oxysporum  f.  sp. lactucae and Growth Promotion on Lettuce Using  Bacterial  Isolates. Journal  of Microbiology  and  Biotechnology , 31 (9), 1241 – 1255.
https://doi.org/10.4014/jmb.2104.04026