http://ejournal.urindo.ac.id/index.php/pertanian

## Uji Antagonis Actinomycetes terhadap Patogen Colletotrichum capsici Penyebab Penyakit Antraknosa pada Buah Cabai Rawit
Reni Nurjasmi dan Suryani
Program Studi Agroteknologi Fakultas Pertanian Universitas Respati Indonesia Jakarta Email: reni_nurjasmi@yahoo.co.id

## ABSTRAK
Colletotrichum capsici merupakan fungi patogen penyebab penyakit antraknosa pada tanaman  cabai.  Pengendalian  fungi  ini  umumnya  menggunakan  fungsida  kimia  yang  justru berdampak negatif bagi lingkungan maupun kesehatan manusia. Pemanfaatan Actinomycetes sebagai  pengendali  hayati  dinilai  lebih  tepat  karena  ramah  lingkungan.  Tujuan  penelitian adalah  mengetahui  kemampuan  actinomycetes  dalam  mengendalikan  patogen C.  capsici penyebab  penyakit  antraknosa  pada  buah  cabai  rawit.  Penelitian  menggunakan  Rancangan Acak Lengkap (RAL). Sampel yang digunakan adalah 9 isolat actinomycetes yang telah diisolasi dari Hutan Pinus Gunung Bunder Bogor dan menghasilkan persentase daya hambat lebih dari 80%  yaitu  isolat PnGB1, PnGB4,  PnGB6,  PnGB9,  PnGB10,  PnGB11, PnGB14, PnGB16,  PnGB17 dan kontrol negatif. Setiap  perlakuan diulang sebanyak 3 ulangan, sehingga terdapat 30 unit percobaan.  Variabel  penelitian  meliputi  masa    inkubasi,  kejadian  penyakit  dan  intensitas penyakit.  Analisis  statistik  dilakukan  dengan  menggunakan    uji    F    ANOVA,    apabila  hasil menunjukkan  perlakuan  berbeda  nyata  maka  dilakukan  uji  perbandingan berganda duncan ( Duncan’s  Multiple  Range  Test ).  Perlakuan  isolat  actinomycetes  berpengaruh  tidak  nyata terhadap  masa  inkubasi  dan  kejadian  penyakit  antraknosa  pada  buah  cabai  rawit  tetapi berpengaruh  nyata  terhadap  intensitas  penyakit.  Perlakuan  PnGB10  merupakan  perlakuan yang terbaik dalam menurunkan intensitas penyakit yaitu sebesar 20,05%.
Kata kunci: Agen biokontrol, Actinomycetes, Antraknosa, Colletotrichum capsici , Cabai rawit

## ABSTRACT
Colletotrichum  capsici  is  a  fungal  pathogen  that  causes  anthracnose  disease  in  chili plants.  Control  of  these  fungi  generally  use  chemical  functions  that  actually  have  a  negative impact  on  the  environment  and  human  health.  Utilization  of  Actinomycetes  as  biological controls is considered more appropriate because it is environmentally friendly. The purpose of this  study  was  to  determine  the  ability  of  actinomycetes  in  controlling  the  pathogenic  C. capsici  that  causes  anthracnose  disease  in  cayenne  pepper.  The  study  used  a  Completely Randomized  Design  (CRD).  The  samples  used  were  9  actinomycetes  isolates  that  had  been isolated from the Gunung Bunder Pine Forest in Bogor and produced a percentage of inhibition of more than 80%, namely PnGB1, PnGB4, PnGB6, PnGB9, PnGB10, PnGB11, PnGB14, PnGB16, PnGB17  and  negative  control  isolates.  Each  treatment  was  repeated  3  replications,  so  that there were 30 units of the experiment. Research variables include incubation period, disease incidence and disease intensity. Statistical analysis was performed using the ANOVA F test, if the  results  showed  a  significantly  different  treatment  then  a  double  comparative  test  was performed  (Duncan's  Multiple  Range  Test).  The  actinomycetes  isolate  treatment  did  not significantly affect the incubation period and the incidence of anthracnose disease in cayenne pepper but it had a significant effect on the intensity of the disease. PnGB10 treatment is the best treatment in reducing the intensity of the disease that is equal to 20.05%.
Key  words: Biocontrol  agents,  Actinomycetes,  Anthracnose,  Colletotrichum  capsici,  cayenne pepper

## PENDAHULUAN
Komoditas  sayuran  penting  di Indonesia  yang  memiliki  nilai  ekonomi tinggi  adalah  cabai.  Permintaan  produk cabai  terus  meningkat  seiring  dengan meningkatnya  jumlah  penduduk  sehingga sangat potensial untuk tetap dibudidayakan  oleh  petani.  Kebutuhan cabai  nasional  dalam  satu  tahun  untuk semua kota-kota besar sekitar 800.000 ton per  tahun, sedangkan pada hari-hari besar keagamaan  kebutuhan  cabai  biasanya meningkat  sekitar  10−20%.  Pada  budidaya tanaman  cabai  terdapat  beberapa  faktor yang  dapat  menurunkan  hasil  produksi, salah  satunya  adalah  adanya  serangan Organisme  Pengganggu  Tanaman  (OPT) berupa  hama,  patogen,  dan  gulma. Penyakit  utama  yang  sering  ditemukan pada  tanaman  cabai  merah  diantaranya yaitu penyakit antraknosa yang disebabkan oleh  fungi  patogen Colletotrichum  capsici .
Patogen ini dapat mengakibatkan
kehilangan produksi cabai hingga lebih dari 60%  [1] sehingga  sangat  merugikan petani apabila tidak segera ditangani.
Penyakit antraknosa pada tanaman cabai  menyebabkan  kerugian  sebesar  60% bahkan apabila tidak dilakukan
pengendalian  secara  tepat  kehilangan hasilnya mencapai 100%. Hal ini mendorong  petani  untuk  menggunakan
pestisida  secara  intensif  dengan  dosis  dan intensitas  yang  tinggibahkan  sebelum  ada seranganOPT. Terdapat lebih dari terdapat lebih dari 60 jenis pestisida yang digunakan petani  di  sentra  produksi  cabai  dengan frekuensi  penggunaan  berkisar  antara  2-3 hari  sekali  dalam  setiap  minggu  atau sekitar  35-50%  dari  total  biaya  produksi. Penggunaan  pestisida  secara  intensif  ini seringkali  menimbulkan  dampak  negatif, baik  terhadap  lingkungan  maupun  produk hasil  pertanian.  Selain  itu,  penggunaan pestisida  kimiawi  yang  berlebihan  dapat menambah biaya produksi dan menyebabkan  resistensi  OPT.  Mengingat besarnya dampak negatif yang ditimbulkan dari  penggunaan  pestisida  kimia  maka perlu  adanya  alternatif  lain  dalam mengendalikan OPT pada tanaman cabai.
Antraknosa  pada  cabai  adalah penyakit  yang  paling  sering  dijumpai  dan hampir  selalu  terjadi  di  setiap  daerah pertanaman  cabai.  Penyakit  ini  dapat mengakibatkan penurunan hasil sampai 50 persen  lebih.  Infeksi  pathogen  dapat terjadi  sejak  tanaman  di  lapangan  sampai tanaman dipanen, karena dapat menurunkan  produksi  baik  secara  kualitas maupun  kuantitas.  Pada  tingkat  serangan yang  berat  dapat  mematikan  tanaman. Serangan pada buah dapat mengakibatkan rusaknya  buah  dan  turunnya  nilai  estetika
dari buah cabai sehingga nilai ekonomisnya juga rendah [2].
C. capsici dapat menyerang sebelum  maupun  sesudah  panen.  Organ tanaman yang paling banyak diserang oleh patogen  ini  adalah  buah  cabai.  Pada  awal serangan,  tanaman  akan  menunjukkan gejala bintik-bintik kecil berwarna kehitaman  dan  sedikit  melekuk  kemudian buah  mengkerut,  kering,  membusuk  dan pada akhirnya jatuh dari pohonnya [3].
Upaya pengendalian penyakit antraknosa  yang  banyak  dilakukan  sampai saat  ini  adalah  aplikasi  fungisida  sintetik. Aplikasi  fungisida  sintetik  dianggap  praktis karena  mudah  didapat  dan  memberikan efek  yang  cepat  tetapi  disamping  itu seringkali  memberi  dampak  negatif  yaitu meninggalkan residu yang berbahaya,  baik terhadap  manusia  maupun  terhadap lingkungan.  Alternatif  untuk  mengurangi penggunaan  fungisida  sintetik  adalah dengan  menggunakan  fungisida  hayati  [4]. Upaya  pengendalian  antraknosa  perlu dilakukan untuk mengoptimalkan produktivitas  cabai,  menekan  kehilangan hasil,  dan  penurunan  kualitas  buah  akibat pemanenan  tersebut.  Beberapa  penelitian telah  dilakukan  untuk  mengendalikan penyakit antraknosa, salah satunya melalui pemanfaatan  fungisida  hayati  yang  lebih ramah  lingkungan  dan  tidak  berbahaya bagi konsumen, diantaranya adalah actinomycetes [5].
Actinomycetes merupakan agen hayati  yang  potensial  dikembangkan sebagai antifungi. Berbagai jenis actinomycetes  telah  diisolasi  dari  berbagai habitat dalam rangka menemukan senyawa  antifungi  baru,  salah  satunya adalah Hutan Pinus Gunung Bunder Bogor. Di  habitat  tersebut  telah  ditemukan actinomycetes  yang  berpotensi  sebagai penghambat  patogen  tanaman Fusarium oxysporum dan C. capsici . Namun penelitian  yang  telah  dilakukan  sejauh  ini baru  uji  antagonis  secara  in  vitro,  oleh karena  itu  pada  penelitian  ini  akan dilakukan  uji  antagonis  actinomycetes terhadap C.  capsici secara  in  vivo  untuk mengetahui  kemampuan  actinomycetes untuk  mengendalikan  penyakit  antraknosa pada  buah  cabai  rawit.  Tujuan  penelitian adalah mengetahui kemampuan actinomycetes dalam mengendalikan patogen C.  capsici penyebab  penyakit antraknosa pada buah cabai rawit.

## METODE

## Bahan dan Alat
Alat  yang  digunakan  adalah  sentrifus, Laminar  air  flow , shaker , hotplate ,  oven,
autoklaf,  pengaduk  kaca,  ose,  spatula, timbangan  digital,  cawan  petri,  mikro pipet, Mikroskop, spektrofotometer, microtip , glass  object , cover  glass, dan glass  ware .  Bahan  yang  digunakan  adalah buah  cabai  rawit  umur  3  bulan,  isolat
actinomycetes,  isolat C.  capsici , Potato Dextrose  Agar (PDA),  pati,  KNO 3 ,  K 2 HPO 4 , MgSO 4 .7H 2 O,  NaCl,  FeSO 4 .7H 2 O, agar powder  bacteriological ,  alkohol  70%, etanol  70%,  Tween  80%,  kloramfenikol, dan H 2 O.

## Rancangan Penelitian
Penelitian  ini  merupakan  penelitian eksperimen,    yaitu    menguji    antagonis actinomycetes  dalam    mengendalikan penyakit    antraknosa  pada    buah  cabai rawit.    Rancangan    penelitian    yang digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL).  Pada penelitian  ini  terdiri    dari    9  isolat actinomycetes  yang  telah  diisolasi  dari Hutan  Pinus  Gunung  Bunder  Bogor  dan menghasilkan  persentase  daya  hambat lebih  dari  80%  yaitu  isolat  PnGB1,  PnGB4, PnGB6, PnGB9, PnGB10, PnGB11, PnGB14, PnGB16,  PnGB17  dan  kontrol  negatif. Setiap    perlakuan  diulang  sebanyak  3 ulangan,  sehingga  terdapat  30  unit percobaan.
Cara Kerja
3.4.1. Peremajaan Actinomycetes
Isolat  actinomycetes  ditumbuhkan pada    media Starch  Nitrat  Agar (SNA) miring    da am  tabung    reaksi.     e an utnya diinkubasi   ada  su u   2  C.  Isolat  murni diremajakan  setiap  satu  sampai  dua minggu sekali.
3.4.2. Peremajaan C. capsici
Isolat C. capsici ditumbuhkan  pada media    PDA    yang    sudah    ditambahkan antibakteri  kloramfenikol.  Miselia  isolat C.capsici pada  tabung  reaksi  diambil menggunakan  ose  steril,  selanjutnya diletakkan miselia dalam cawan petri yang telah  berisi    media  PDA  kemudian diinkubasi    selama    7    hari    pada    suhu ruang.

## 3.4.3. Peremajaan Actinomycetes
Isolat  actinomycetes  diremajakan pada    media    SNA.    Masing-masing    isolat diambil    sebanyak    satu    ose,  dan digoreskan  pada  cawan  petri  yang  berisi media    SNA    padat.    Media    yang  telah berisi    isolat    kemudian    diinkubasi selama    7  sampai  dengan  14  hari    pada suhu  ruang.

## 3.4.4. Pembuatan suspensi C. capsici
Biakan  jamur    yang    telah ditumbuhkan    pada    media    PDA dimasukkan    ke    dalam    erlenmeyer    yang berisi  50  ml aquabides   steril,  kemudian digojog  menggunakan shaker  incubator selama    6    hari    dengan    kecepatan    150 rpm    pada    suhu    ruang.  Suspensi    jamur diambil    dengan    pipet    volumetri    dan jumlah  konidia    dihitung  menggunakan spektrofotometer. Apabila jumlahnya
terlalu padat maka dilakukan
pengenceran  sampai  diperoleh  kerapatan suspensi  jamur adalah 1,25x10 6 sporal/ml.
3.4.5. Pembuatan suspensi actinomycetes
Biakan  actinomycetes  yang  telah ditumbuhkan  pada  media  SNA  dimasukan ke  dalam  erlenmeyer  50  ml  aquabides steril,  kemudian      digojog      menggunakan shaker incubator selama  7 sampai dengan 14    hari    dengan    kecepatan    150    rpm pada  suhu  ruang. Suspensi  actinomycetes diambil    dengan    pipet    volumetri    dan jumlah  sel    dihitung  menggunakan spektrofotometer. Apabila jumlahnya terlalu padat maka dilakukan
pengenceran  sampai  diperoleh  kerapatan actinomycetes adalah 10 8 cfu/ml.
3.4.6. Pengujian in vivo isolat actinomycetes  terhadap C.  capsici pada  buah cabai rawit Pengujian  in  vivo  mengacu  pada metode [6]. Buah  cabai  disterilisasi  pada NaCl 0,5%  selama        5  menit  dan  dicuci pada    air    steril,    selanjutnya    permukaan buah  disterilkan    dengan    etanol    70%. Selanjutnya    buah    cabai    direndam  di dalam    suspensi  actinomycetes  dengan kerapatan  10 8 cfu/ml  selama    2  jam, selanjutnya  ditetesi  dengan  0,02%  tween 80  %    (v/v)    sebagai    penguat    penetrasi. Setelah    2    jam    dilanjutkan    dengan meneteskan  suspensi  C.  capsici  sebanyak 20    μ     dengan    kera atan    se nya 1,25x10 6 konidia/ml  dan  0,02%  tween80%
(v/v)  pada  permukaan  buah  cabai  yang sudah    dilukai    dengan    menggunakan jarum  ose  steril.  Seluruh      perlakuan
diletakkan   pada   wadah  tertutup   pada suhu   kamar selama  7  hari.  Selanjutnya hal-hal    yang    diamati    setelah    inkubasi adalah    gejala  antraknosa    yang    berupa bercak    coklat,  kejadian  penyakit,    dan intensitas penyakit [7].

## 3.5. Variabel Penelitian
a. Masa  inkubasi  (hari)
Masa    inkubasi    merupakan    waktu yang    diperlukan  patogen    untuk melakukan infeksi, dihitung berdasarkan    waktu    gejala  pertama muncul pada buah cabaisetelah inokulasi.  Gejala  pada  buah  cabai berupa  bercak  kecil  dan  berair.  Ukuran luka tersebut dapat mencapai 3 – 4 cm pada    buah    cabai    yang    berukuran besar.    Pada    serangan    lanjut    yang sudah    parah,    gejala    luka    tersebut lebih    jelas    tampak    seperti    luka terbakar  matahari    dan    berwarna antara    merah    tua    sampai    coklat menyala  hingga hitam [8].
b. Kejadian penyakit (%)[9]:
Kejadian penyakit = n x 100%
N
Keterangan:   n:  jumlah  titik  luka  yang bergejala;    N:    jumlah titik  luka yang  diamati
c.  Intensitas penyakit (%)[8]:
Intensitas serangan = {∑ (n x V)} x 100% Z x N
Keterangan:      n:    jumlah    buah  setiap kelas  bercak;  V:  nilai skor setiap kelas bercak; N:    jumlah  buah  yang diamati;  Z:  skor  kelas bercak tertinggi Skor  penyakit  yang  digunakan  adalah sebagai berikut :
i. Skor penyakit 0:  Tidak ada infeksi
ii. Skor  penyakit  1:    Luas    permukaan
tanaman atau bagian tanamanyang terserang mencapai 10%-25% iii. Skor  penyakit  2:    Luas    permukaan tanaman atau bagian tanamanyang terserang lebih besar  dari  25%- 50% iv. Skor  penyakit  3:  Luas    permukaan tanaman atau bagian    tanaman yang terserang lebih  besar  dari
50%-75%
v. Skor penyakit 4:  Tanaman mati

## 3.6. Analisa Data
Analisis  statistik  dilakukan  dengan menggunakan  uji  F  ANOVA,  apabila hasil menunjukkan    perlakuan    berbeda    nyata maka    dilakukan    uji    perbandingan berganda  duncan  ( Duncan’s  Multiple Range Test ). Analisis dilakukan pada selang ke ercayaan 95%  (α = 0,05) menggunakan program SPSS.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1.      Pengaruh  aplikasi  actinomycetes terhadap  masa  inkubasi  penyakit antraknosa pada buah cabai rawit
Masa  inkubasi  merupakan  waktu yang diperlukan patogen untuk melakukan infeksi  dihitung  berdasarkan  waktu  gejala pertama  muncul  pada  buah  cabai  setelah inkubasi. Semua isolat actinomycetes  yang diuji  mampu  menunda  terjadinya  gejala serangan C.  capsici dengan  masa  inkubasi lebih lama dibandingkan kontrol. Rata-rata masa  inkubasi  penyakit  antraknosa  pada buah  cabai  rawit  setelah  diberi  perlakuan actinomycetes  disajikan  pada  Tabel  1.
Tabel 1.   Pengaruh aplikasi actinomycetes terhadap masa inkubasi penyakit antraknosa pada buah cabai rawit
Perlakuan Masa Inkubasi (hari) PnGB1 5,50 a PnGB4 4,75 a PnGB6 5,10 a
PnGB9 5,20 a PnGB10 5,75 a PnGB11 4,75 a PnGB14 5,50 a PnGB16 5,00 a PnGB17 4,75 a Kontrol 4,25 a Keterangan: Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom menunjukkan  berbeda  tidak  nyata  dengan  menggunakan  uji  lanjut Duncan pada taraf 5% Aplikasi  actinomycetes  sebagai  agen biokontrol secara in vivo mampu mengurangi serangan penyakit antraknosa.
Gejala awal penyakit antraknosa pada buah cabai berupa titik kecil berwarna kehitaman yang lama-kelamaan membesar dan  membentuk  lekukan.  Pada  lekukan tersebut  terdapat  struktur  berwarna kehitaman  yang  disebut  seta  yang merupakan ciri khas C. capsici . Gejala lebih lanjut dari penyakit antraknosa
menyebabkan  buah  menjadi  kering  dan keriput.
Dari  uji  patogenisitas,  gejala  awal serangan  penyakit  antraknosa  ditandai dengan timbulnya bercak berwarna merah kehitaman  pada  permukaan  cabai.  Bercak tersebut  kemudian  melebar  dan  berubah warna  menjadi  hitam  pada  bagian  tengah cabai.  Gejala  serangan  antraknosa  diawali dengan  adanya  bintik  kecil  berwarna kehitaman  dan  berlekuk  [10].  Gejala penyakit antraknosa oleh jamur Colletotrichum  capsici pada  buah  cabai adalah  berupa  bercak  cokelat  kehitaman,
kemudian meluas menjadi busuk lunak dan pada  bagian  tengah  bercak  terdapat  titik- titik hitam [11].
Masa  inkubasi  merupakan  periode waktu  yang  dibutuhkan  patogen  sejak pertama  terjadi  kontak  hingga  timbul infeksi  yang  diperlihatkan  melalui  gejala yang muncul pada buah cabai. Berdasarkan pengamatan  gejala  patogen  antraknosa pada  buah  cabai  rawit  yakni  berupa timbulnya  cekungan  berwarna  coklat  tua yang  semakin  hari  semakin  membesar pada  permukaan  buah  [12].  Buah  cabai merah  besar  yang  terserang  antraknosa menunjukkan  gejala  berupa  timbulnya cekungan yang membesar pada permukaan  buah  dan  pada  bagian  tengah cekungan  terrdapat  kumpulan  titik-titik hitam yang merupakan kelompok aservulus [13] .
4.2.  Pengaruh  aplikasi  actinomycetes terhadap kejadian penyakit
antraknosa pada buah cabai rawit
Gejala  awal  penyakit  antraknosa adalah  bercak  kecil  seperti  tersiram  air
dengan  warna  bercak  kehitaman  pada permukaaan buah yang terinfeksi kemudian  menjadi  busuk  lunak.  Ekspansi bercak yang maksimal membentuk lekukan dengan  berwarna  merah  gelap.  Serangan yang  berat  menyebabkan  seluruh  buah keriput  dan  mengering.  Gejala  segera nampak  berupa  titik  gelap,  sedikit  cekung dan  bergaris  tengah  4  mm.  Bercak  akan segera  berkembang  hingga  mencapai seluruh  permukaan  buah.  Patogen  dapat menginfeksi  buah  melalui  luka  maupun secara  langsung.  Sedangkan  keadaan  yang basah  dan  adanya  air  hujan  sangat berperan  dalam  penyebaran  spora  dari satu tanaman ke tanaman lain [14].
Kejadian penyakit pada perlakuan isolat actinomycetes seperti yang disajikan
pada Tabel 2. Perlakuan
filtrat
actinomycetes  tidak  sepenuhnya  mampu menghambat  perkembangan  C.  capsici, yang  ditandai  dengan  adanya  bercak  pada buah  cabai  pada  setiap  perlakuan.  Hal  ini disebabkan  karena  adanya  pelukaan  saat inokulasi patogen sehingga memungkinkan patogen  berkembang  sebelum  dihambat oleh  filtrat  yang  kuat,  sehingga  kejadian penyakit  antraknosa  pada  buah  cabai terjadi  pada  semua  perlakuan  dengan tingkat kejadian penyakit 100%.
Kejadian  penyakit  sangat  baik untuk dijadikan referensi dari sisi ekonomi karena  memperhitungkan  seberapa  besar kehilangan buah dari serangan antraknosa. Kejadian penyakit menunjukkan parameter terbaik  untuk  dijadikan  tolak  ukur klasifikasi tingkat ketahanan [15].
Tabel  2.  Pengaruh  aplikasi  actinomycetes  terhadap  kejadian  penyakit  antraknosa  pada  buah cabai rawit Perlakuan Kejadian penyakit (%) PnGB1 100 a PnGB4 100 a PnGB6 100 a PnGB9 100 a PnGB10 100 a PnGB11 100 a PnGB14 100 a PnGB16 100 a PnGB17 100 a Kontrol 100 a Keterangan: Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom menunjukkan  berbeda  tidak  nyata  dengan  menggunakan  uji  lanjut Duncan pada taraf 5%
4.3.  Pengaruh  aplikasi  actinomycetes terhadap  intensitas  penyakit  antraknosa pada buah cabai rawit
Berdasarkan  hasil  sidik  ragam aplikasi  actinomycetes  pada  buah  cabai menunjukkan  hasil  berbeda  nyata  dalam
menekan  intensitas  penyakit  antraknosa. Tabel  3  menunjukkan  bahwa  semua  isolat actinomycetes memiliki kemampuan menghambat  penyakit  antraknosa  pada buah  cabai  rawit  yang  ditunjukkan  oleh intensitas  penyakit  antraknosa  pada  buah cabai  yang  diaplikasikan  actinomycetes lebih rendah dibandingkan kontrol. Perlakuan  PnGB10  menunjukkan  tingkat intensitas  paling  rendah  (20,05%)  dan berbeda  nyata  pada  setiap  perlakuan kecuali PnGB1 (27,45%).
Penghambatan  gejala  antraknosa yang  disebabkan  oleh  actinomycetes
diduga akibat adanya mekanisme
kompetisi nutrisi dan ruang serta parasitisme.  Pelukaan  buah  yang  dibuat untuk inokulasi patogen dimanfaatkan oleh actinomycetes  untuk  memperoleh  nutrisi serta  mampu  mengkolonisasi  permukaan buah  dengan  cepat  dibandingkan  dengan C.  capsici .  Isolat  actinomycetes  diduga menghasilkan  enzim  litik  serta  memiliki mekanisme  hiperparasitisme  terhadap C. capsici . Oleh karena itu, isolate actinomycetes  memiliki  potensi  untuk menggantikan fungisida kimia.
Strategi umum pengendalian hayati  adalah  menggunakan  organisme hidup  sebagai  agen  pengendalian  hayati
penyakit  prapanen  dan  pascapanen  pada buah-buahan  dan  sayuran.  Pengendalian penyakit  pascapanen  lebih  efektif  dan efisien  daripada  pengendalian  prapanen [16].
Perlakuan filtrat isolat Actinomycetes PnGB10 menunjukkan
aktivitas  penghambatan  yang  paling  kuat terhadap C.  capsici dengan  luas  bercak terendah  dibandingkan  dengan  isolat lainnya, hal itu dikarenakan isolat tersebut melalui  mekanisme  antagonisnya  mampu mengurangi  jumlah  inokulum  awal  jamur patogen.
Metode  pengendalian  dengan mikroba antagonis terhadap Colletotrichum bertujuan  untuk  mengurangi  infeksi  awal. Senyawa  yang  dihasilkan  oleh  bakteri antagonis dapat menghambat perkecambahan  konidia  dan  penyerapan nutrisi  yang  dibutukan  patogen  untuk berkembang.  Meskipun  penetrasi  telah berhasil  dilakukan  oleh  jamur  patogen, tetapi sebelum infeksi berkembang, pertumbuhan hifa dihambat oleh antibiotik atau  enzim  litik  yang  dihasilkan  oleh mikroba, sehingga menyebabkan
pengurangan perkembangan bercak nekrosis [17]. Tabel 3. Pengaruh aplikasi actinomycetes terhadap intensitas penyakit antraknosa pada buah cabai rawit Perlakuan Intensitas Penyakit (%) PnGB1 27,45  bc
PnGB4 86,30 a PnGB6 77,65 a PnGB9 75,20 ab PnGB10 20,05    c PnGB11 82,65 a PnGB14 76,20 ab PnGB16 68,80 ab PnGB17 87,65 a Kontrol 100,00 a Keterangan: Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom menunjukkan  berbeda  tidak  nyata  dengan  menggunakan  uji  lanjut Duncan pada taraf 5%
Perlakuan  filtrat  isolat  actinomycetes lainnya  memperoleh  hasil  yang  kurang optimal  dalam  mengurangi  intensitas penyakit.  Hal  ini  diduga  dikarenakan kandungan  senyawa  antibiotiknya  kurang optimum,  sehingga  kurang  efektif  dalam mengendalikan jamur C. capsici . Selain itu, permukaan  buah  yang  licin  diduga berpengaruh  terhadap  keefektifan  filtrat dalam  menekan  pertumbuhan  jamur patogen, sehingga tidak sepenuhnya filtrat mampu mengurangi infeksi patogen.
Perlakuan  filtrat P.  fluorescens isolat actinomycetes PnGB10 paling efektif mengurangi intensitas penyakit jika dibandingkan  dengan  perlakuan  lainnya,
diduga  senyawa  yang  dihasilkan  lebih efektif dalam mengurangi jumlah inokulum awal,  yang  menyebabkan  spora  tidak mampu  untuk  berkembang.  Hal  ini menyebabkan terhambatnya proses pembentukan  dinding  sel  yang  diperlukan untuk memanjangkan ujung hifa, percabangan  dan  pembentukan  spora, menghambat pembentukan tabung kecambah  (germinasi)  dan  pertumbuhan miselium,  menghambat  atau  mengganggu permeabilitas membran sel jamur,
sehingga patogen tidak mampu melakukan proses infeksi selanjutnya [18].

## SIMPULAN
Kesimpulan penelitian
adalah penggunaan  actinomycetes  sebagai  agen biokontrol dalam uji in vivo dapat menekan masa  inkubasi,  kejadian  penyakit  dan intensitas  penyakit  antraknosa  pada  buah cabai rawit. Perlakuan PnGB10 merupakan
perlakuan yang terbaik dalam menurunkan intensitas penyakit yaitu sebesar 20,05%.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]      Sektiono,  A.W.,  S.N.  Kajariyah,  dan  S. Djauhari.  2016.  Uji  Antagonisme
Actinomycetes  Rhizosfer  dan  Endofit Akar Tanaman Cabai ( Capsicum Frutescens L.) terhadap Jamur Colletotrichum  Capsici (Syd.)  Bult  Et Bisby. Jurnal HPT, 4 (1), Januari 2016. ISSN : 2338 – 4336. [2]    Nurhayati.  2011.  Efetivitas  Ekstrak Daun Sirih terhadap Infeksi Colletotrichum  Capsici pada  Buah Cabai.  Dharmapala,  Volume  3,  No.  2. Fakultas Pertanian, Universitas Sriwijaya, Sumatera Selatan.
[3]  Rusli,  I.,  Mardinus  dan  Zulpadli.  1997.
Penyakit  Antraknosa  pada Buah Cabai Di  Sumatera  Barat.  Prosiding  Kongres Nasional XVI Perhimpunan Fitopatologi Indonesia, Palembang.
[4]  Elfina, Y.,  M. Ali dan L. Aryanti. 2015. Uji  Beberapa  Konsentrasi  Ekstrak Tepung  Daun  Sirih  Hutan  ( Piper Aduncum L.)  Untuk  Mengendalikan Penyakit  Antraknosa Pada Buah Cabai Merah Pasca Panen. SAGU Vol. 14 No. 2  :  18-27.  Fakultas  Pertanian,
Universitas Riau, Pekanbaru.
[5]  Wilia  W.  2010.  Potensi  Cendawan
Endofit dan Khamir untuk Mengendalikan Penyakit  Antraknosa  ( Colletotrichum Acutatum L.)  pada  Tanaman  Cabai [Tesis]. Institut Pertanian Bogor.
[6]  Dan H, X. D. Zheng , Y.M. Yin , P. Sun., dan  H.Y.  Zhang  .  2003.  Yeasts Application  For  Controlling  Apple
Postharvest Diaseases Associated with  P ennicilliu m Expasum Bot.  Bull.
Acad. Sin.Vol. 44 : 211-216. [7]  Marlina,  Hafsah,  dan  Siti.  R.  2012. Efektivitas Lateks Pepayat Perkembangan Colletotrichum  Capsici pada  Buah  Cabai  .  Jurnal  Penelitian Universitas  Jambi  Seri  Sainsvol.14. No.1
[8]  Syabana,  M.  A.  Saylendra,    A.,  dan Ramadhani,  D.  2015.  Aktivitasanti Cendawan Ekstrak Daun Sereh   Wangi
( Cymbopogan Nardus ) terhadap
Colletotrichum  sp .  Penyebab  Penyakit Antraknosa  pada    Buah  Cabai ( Capsicum    Annum )  Secara  In  Vitro dan  In  Vivo:  Agrologia,  Vol.4,  No.1
April 2015.
[9]  Handayani,  R.  M.  2016.  Potensi Cendawan  Endofit  Dalam  Upaya Pengendalian  Penyakit  Antraknosa ( Colletotrichum Capsici ) pada Tanaman Cabai Merah. Skripsi. Institut
Pertanian Bogor.
[10] Semangun  H.  2000.  Pengantar  Ilmu Penyakit Tumbuhan. Yogyakarta.
Gadjah Mada University Press.
[11]  Novizan.  2002.  Reaksi  Beberapa
Kultivar Buah Lombok Besar ( Capsicum Annuum L.)  terhadap
( Colletotrichum Capsici ). Risalah Seminar  Perhimpunan  Fitopathologi
Indonesia VIII. Cibubur, Jakarta, Okt.
[12] Harmaningrum, N.W. 2015. Peningkatan  Potensi  Agen  Hayati untuk Mengendalikan Penyebab Penyakit  Antraknosa  ( Colletotrichum Sp.)  pada  Tanaman  Cabe  Jawa  ( Piper Retrofractum Vahl.) Melalui Penambahan Bahan Organik [Skripsi] . Universitas Jember.
[13]  Nayaka,  S.C.,  Shankar,  A.C.U., Niranjana,  S.R.,  Prakash,  H.S.,  dan
Mortensen,  C.N.  (2009).  Anthracnose Disease  of  Chilli  Pepper.  Technical Bulletin.
[14] Zen, K., R. Setiamihardja, Murdaningsih,  dan  T.  Suganda.  2002. Aktivitas Enzim Peroksidase  pada Lima  Genotip  Cabai yang  Mempunyai  Ketahanan  Berbeda Terhadap Penyakit Antraknosa. Jurnal Agronomi . Zuriat 13(2):97-105.
[15]  Purwati,  E.,  B.  Jaya.,  dan  A.  S.  Duriat. 2000.  Penampilan  Beberapa  Varietas Cabai  dan  Uji  Resistensi  Terhadap
Penyakit Virus Kerupuk. Jurnal
Hortikultura. 10(2):88-94.
[16] Dharmaputra,  O.  S.,  Lisdar,  I.  S.,  dan Maria,  M.  M.  2016.  Potensi  Khamir sebagai  Agens  Pengendalian  Hayati Colletotrichum  Capsici ,  Cendawan Penyebab  Antraknosa  pada  Buah Cabai. J. Hort. Indonesia 7(2): 91-101.
[17]  Jeffries,  P.  dan  I.  Koomen.  1992.
Strategies dan Prospects for Biological Control  of  Diseases  Caused  by Colletotrichum. In J. A. Bailey dan M. J
Jeger  (Eds.)  Colletotrichum  Biology, Pathology and Control. CAB Internasional 337-357.
[18]  Compant,  S.,  B.  Duffy,  J.  Nowak,  C. C e’Ment.  dan  E.  D.  A.  Barka.  2005. Use  of  Plant  Growth-Promoting Bacteria  for  Biocontrol  of  Plant Diseases:  Principles,  Mechanisms  of Action,  and  Future  Prospects. Applied and Environmental Microbiology 72(9): 4949-4959.