e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022

## RESPONS GLUKOSA DARAH IKAN BREK (Puntius orphoides) TERHADAP STRES PADAT TEBAR
Response of Blood Glucose of Brek Fish (Puntius Orphoides C.V) on Stocking Density Stress
Asep Rachmat Pratama 1*) , Iskandariah 2) , Elinah 3) , Siti Yulianti 4)
1,2,3,4 Program Studi Budidaya Perikanan, Fakultas Teknologi Kelautan dan Perikanan Universitas Nahdlatul Ulama Cirebon Jl. Sisingamangaraja No. 33, Lemahwungkuk
Kota Cirebon, 45111, Jawa Barat Indonesia
*) Korespondensi: pratama.rama.putera@unucirebon.ac.id
Diterima: 1 September 2022; Disetujui: 28 November 2022

## ABSTRAK
Penelitian  ini  dilakukan  dengan  tujuan  untuk  mengetahui  performa  glukosa  darah  ikan  brek (Puntius  orphoides) dalam  merespons  stres  padat  tebar.  Ikan  berbobot  rata-rata  2,21  g sebanyak  27  ekor  diberi  stres  padat  tebar  dengan  cara  dimasukkan  ke  dalam  9  buah  wadah silinder luas 200,96 cm 2 dan volume 3 L air gambut yang berbeda padat tebar selama 72 jam. Perlakuan stres padat tebar tersebut  adalah A (2 ekor/0,02 m 2 ), B (3 ekor/0,02 m 2 ) dan C (4 ekor/0,02 m 2 ) dengan tiga ulangan. Glukosa darah diukur dari 1 ekor ikan per wadah pada jam ke-72. Uji pendahuluan dilakukan untuk mengetahui kebutuhan oksigen ikan brek melalui uji tingkat  konsumsi  oksigen  yang selanjutnya dapat dihitung kebutuhan oksigen dari  ikan brek sesuai dengan kepadatan yang digunakan. Nilai rata-rata kadar glukosa darah ikan brek yang diberi stres padat tebar 2 ekor/0,02 m 2 , 3 ekor/0,02 m 2 dan 4 ekor/0,02 m 2 cenderung rendah, yaitu  masing-masing  53  mg/dL,  52,67  mg/dL  dan  49,33  mg/dL.  Respons  glukosa  darah terhadap  stres  padat  tebar  menghasilkan  rekomendasi  padat  tebar  pemeliharaan  ikan  brek berkisar 100-200 ekor/m 2 .
Kata Kunci : glukosa darah, ikan brek, Puntius orphoides , stres, padat tebar

## ABSTRACT
This  research  was  conducted  with  the  aim  to  evaluate  the  performance  of  blood  glucose  of brek fish (Puntius orphoides) in response to stocking density stress. Fish weighing an average of 2.21 g with a weight of 27 individuals were given stocking density stress by inserting them into 9 cylindrical containers of 200.96 cm 2 width and 3 L volume of peat water with stocking differently  for  72  hours.  These  stocking  density  treatments  are  A  (2  fishes/0.02  m 2 ),  B  (3 fishes/0.02 m 2 ) and C (4 fishes/0.02 m 2 ) with three replicates. Blood glucose collected from 1 fish per container  at  72 hours.  The preliminary test was conducted to  determine the oxygen demand  of  fish  through  the  oxygen  consumption  level  test  which  can  then  be  calculated oxygen demand from the fish in accordance with the density used. The average value of blood glucose levels of brek fish that were given the stress of stocking density 2 fishes / 0.02 m 2 , 3 fishes / 0.02 m 2 and 4 fishes / 0.02 m 2 tends to be low, that is 53 mg / dL, 52.67 mg / dL and 49.33 mg / dL respectively. The response of blood glucose to stocking density stress results in stocking recommendations for culture brek fish ranging from 100-200 fish / m 2 .
Keywords : blood glucose, brek fish, Puntius orphoides, stress, stocking density
e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022

## PENDAHULUAN
Ikan  brek  ( Puntius  orphoides C.V) merupakan  salah  satu  ikan  air  tawar  yang masih liar dan berpotensi untuk dikembangkan sebagai ikan budidaya. Ikan brek  banyak  disukai  oleh  masyarakat karena memiliki rasa mirip ikan tawes dan mempunyai  nilai  ekonomis  (Setyaningrum dan  Santoso,  2008).  Menurut    Champasri et  al. (2007)  beberapa  penelitian  di Thailand  menunjukkan  ikan-ikan  dari genus  Puntius  umumnya  merupakan  ikan komersial  penting  dan  sumber  protein  bila dikonsumsi. Berdasarkan minatnya masyarakat  terhadap  ikan  brek,  sangat berpeluang  untuk  melakukan  domestikasi dan  budidaya.  Bahkan  kelebihan,  dari usaha  budidaya  dapat  mempertahankan keberadaan kelestarian ikan brek di sungai sebagai  habitat  aslinya  (Suryaningsih  dan Suwarno,  2009).  Upaya    budidaya  ikan brek  dapat  dilakukan  melalui  usaha pembenihan  untuk  menghasilkan  benih baik  dari  segi  kualitas  dan  kuantitas sehingga  kebutuhan  konsumen  terhadap ikan  brek  dapat  terpenuhi  dan  untuk menjaga kelestariannya di alam selanjutnya  diperlukan  teknologi  budidaya dalam memproduksi ikan brek.
Pada  pemeliharaan  larva,  padat  tebar (Stocking density) merupakan faktor pembatas  yang  berkaitan  dengan  ruang gerak  dan  kompetisi  mendapatkan  pakan. Peningkatan  pada  saat  penebaran  akan mengganggu  tingkah  laku  ikan  terhadap ruang gerak yang akhirnya dapat menyebabkan  pertumbuhan,  pemanfaatan pakan  dan        sintasan  mengalami penurunan (Azhari et al., 2017). Pertumbuhan  juga  dipengaruhi  kepadatan ikan  yang  ditebar,  dimana  dengan  padat tebar  yang  rendah,  pertumbuhan  ikan relatif  lebih  cepat  dan  sebaliknya  pada padat  tebar  yang  tinggi  pertumbuhan  ikan relatif  lebih  lambat  (Winata,  2012; Situmeang, 2019).
Keberhasilan budidaya ikan dipengaruhi  oleh  sifat  fisiologi  ikan sendiri, ukuran ikan, kebugaran (kualitas
ikan), kualitas air (suhu, DO, pH, CO 2 dan amonia),  kepadatan  ikan  dalam  wadah, teknik  mobilitas  dengan  menggunakan suhu  rendah  atau  bahan  kimia  serta metabolit  alam  dan  lama  pengangkutan (Suryaningrum  2000).  Pada  kenyataan dalam  melakukan  kegiatan  budidaya  ikan hidup  selalu  terjadi  kompetisi  penggunaan ruang  dan  pemanfaatan  oksigen  yang tersedia (Berka, 1986).
Peningkatan padat tebar akan menyebabkan stres yang menginduksi pada tingginya tingkat glukosa darah, selanjutnya mengganggu pertumbuhan bahkan  mengkibatkan  kematian.  Glukosa darah  merupakan  sumber  pasokan  bahan bakar  utama  dan  substrat  esensial  untuk metabolisme  sel  terutama  sel  otak.  Untuk berfungsinya otak secara kontinyu dibutuhkan  glukosa  secara  terus  menerus (Steward, 1991). Pada hewan poikilotermik termasuk ikan brek, peningkatan  padat  tebar  akan  berpengaruh langsung  terhadap  proses  metabolisme. Kebutuhan  energi  dari  glukosa  untuk menangani  stres  dapat  terpenuhi  apabila glukosa  dalam  darah  dapat  segera  masuk ke  dalam  sel  target.  Keberhasilan  pasok glukosa    ke  dalam  sel  ditentukan  oleh kinerja  insulin.  Sedangkan  selama  stres terjadi inaktivasi insulin sehingga menutup penggunaan  glukosa  oleh  sel  (Brown, 1993; Wendelaar, 1997).
Konsumsi oksigen merupakan kuantifikasi  oksigen  yang  dibutuhkan  oleh suatu  organisme  hidup  (ikan).  Konsumsi oksigen  pada  ikan  digunakan  sebagai parameter  laju  metabolisme  pada  ikan dalam  satuan  mg  O 2 /g/jam  (Julian,  2003). Penggunaan  konsumsi  oksigen  sangat dipengaruhi  oleh  kepadatan  ikan  brek. Oksigen  dibutuhkan  oleh  organisme  untuk membantu proses metabolisme yang terjadi di  dalam  tubuh.  Oksigen  yang  masuk tersebut mengalami proses respirasi insang. Hal  ini  sesuai  dengan  pernyataan  Wibowo et al. (1987) yang menyatakan bahwa pada suhu 21-27 ⁰ C cenderung terjadi peningkatan metabolisme sehingga
e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022
respirasi  meningkatkan  ekskresi  amonia. Kandungan  oksigen  terlarut  menunjukan penurunan  dengan  makin  meningkatnya tingkat kepadatan dan lama waktu transportasi.  Hal  ini  membuktikan  bahwa tingkat konsumsi oksigen sangat dipengaruhi oleh faktor kepadatan sehingga  dari  kajian  tersebut  dapat disimpulkan  peranan  faktor  kepadatan. Menurut  Fujaya  (1999),  faktor  biotik seperti aktivitas, bobot tubuh, umur, stresor dan puasa memengaruhi tingkat
metabolisme yang selanjutnya akan mempengaruhi laju konsumsi oksigennya.
Peningkatan  kepadatan  menyebabkan penurunan  kualitas  air  selama  budidaya. Hal  ini  terlihat  dari  kondisi  visual  air selama pemeliharaan air media agak keruh, berlendir  dan  respons  ikan  terhadap perubahan lingkungan suhu, oksigen terlarut,  serta  peningkatan  metabolisme ikan  ditunjukkan  oleh  perubahan  warna (Suryaningrum, 2000). Tujuan dari penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui performa  glukosa  darah  ikan  brek  dalam merespon peningkatan padat tebar sehubungan dengan intensifikasi akuakultur. Informasi ini bermanfaat untuk mengetahui  tingkat  stres  yang  dialami ikan,  sehingga  membuka  kemungkinan jalur penanggulangan gangguan pertumbuhan  pasca  stres  padat  tebar. Sehubungan  dengan  hal  tersebut  di  atas diperlukan  juga  informasi  fisiologis  untuk memecahkan  masalah  tersebut  dengan melakukan  penelitian  tentang  tingkat konsumsi oksigen pada benih ikan brek.

## METODE PENELITIAN
Ikan  yang digunakan dalam  penelitian ini  adalah  ikan  brek  ( P.  orphoides C.V) dengan  bobot  rata-rata  2,21  g.  Ikan  untuk uji  glukosa  darah  ini  dipelihara  selama  72 jam  dan  dipuasakan  48  jam  sebelum pengambilan  sampel  darah.  Penelitian  ini dilakukan  selama  satu  bulan,  yaitu  pada bulan  Juni  -  Juli  2022  di  Laboratorium Hatchery  Satuan  Pelayanan  Konservasi
Perairan  Daratan  Ciranjang,  CDKPWS Dinas  Kelautan  dan  Perikanan  Provinsi Jawa  Barat.  Penelitian  ini  menggunakan rancangan  acak  lengkap  dengan  tiga perlakuan yaitu padat tebar 2 ekor/0,02 m 2 atau  100  ekor/m 2 (A),  padat  tebar  3 ekor/0,02  m 2 atau  150  ekor/m 2 (B),    padat tebar 4 ekor/0,02 m 2 atau 200 ekor/m 2 (C), dan  padat  tebar  5  ekor/0,02  m 2 atau masing-masing  tiga  kali  ulangan.  Ikan dipelihara  pada  wadah  berupa  akuarium dengan  ukuran  60  cm  x  40  cm  x  30  cm yang didalamnya diisi 3 L air.
Uji  pendahuluan  dilakukan  untuk mengetahui  kebutuhan  oksigen  ikan  brek melalui  uji  tingkat  konsumsi  oksigen (TKO)  yang  selanjutnya  dapat  dihitung kebutuhan  oksigen  dari  ikan  brek  sesuai dengan  kepadatan  yang  digunakan.  Dari nilai  difusi  oksigen  yang  berasal  dari  titik aerasi  dapat  dihitung  peningkatan  oksigen sebelum  dan  sesudah  diberis    titik  aerasi. Setelah  itu  dihitung  peningkatan  oksigen per  jam  pada  wadah  budidaya  yang dihasilkan  oleh  titik  aerasi  dan  kemudian dikurangi  dengan  konsumsi  oksigen  ikan brek  per  jamnya.  Data  ini  selanjutnya dijadikan acuan untuk menentukan oksigen minimum  yang  harus  terpenuhi  di  dalam wadah budidaya. Untuk uji TKO menggunakan  wadah  berupa  akuarium dengan ukuran 5 L yang didalamnya diisi 3 L  air  dan  diaerasi  kencang  selama  24  jam untuk  mendapatkan  nilai  oksigen  terlarut jenuh. Proses selanjutnya adalah pengambilan ikan brek dengan jumlah dua ekor  ikan  brek  berukuran  rata-rata  1,91 g/ekor.  Pengukuran  oksigen  terlarut  awal pada media dilakukan dengan menggunakan DO-meter. Selanjutnya hewan  uji  tersebut  dimasukkan  ke  dalam wadah  dan  ditutup  rapat  dengan  tujuan untuk menghindari kontak langsung antara udara  dengan  permukaan  air  wadah. Selanjutnya  diamati  penurunan  kadar oksigen  terlarut  setiap  satu  jam  selama  5 jam  yang  kemudian  akan  dimasukkan  ke dalam  rumus  untuk  mendapatkan  nilai
e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022
konsumsi  oksigen  per  bobot  ikan  per satuan waktu.

## Tingkat Konsumsi Oksigen
Tingkat  konsumsi  oksigen  (TKO) merupakan  variabel  yang  dapat  digunakan untuk  menentukan  laju  metabolisme  yang berkaitan dengan pertumbuhan.
Pengukuran TKO ikan brek dilakukan pada jam  ke-72.  Tingkat  konsumsi  oksigen dihitung berdasarkan NRC (1977) :
Wxt DO DO Vx TKO TT T ) ( 0  
Keterangan: TKO  =  Tingkat  konsumsi  oksigen  (mg O 2 /g/jam)
V =  Volume air dalam wadah (L)
DOt0 = Konsentrasi oksigen terlarut pada awal pengamatan (mg/L) DOtt  =  Konsentrasi  oksigen  terlarut  pada waktu t (mg/L) W = Bobot ikan uji (g)
t = periode pengamatan (jam)

## Kadar Glukosa
Pengukuran  glukosa  darah  dilakukan sebagai  indikator  stres  sekunder  yang diakibatkan  oleh  perlakuan  perbedaan padat  tebar.  Pengujian  glukosa  darah  ikan brek  dilakukan pada jam ke-72. Sebanyak satu  ekor  ikan  brek  pada  setiap  wadah diambil  darahnya  dan  diuji  dengan  test  kit glukosa  darah (Gluco  DR  Auto  AGM 4000) .  Nilai  yang  tertera  pada  alat merupakan  gambaran  glukosa  darah  ikan yang ditampilkan dengan satuan mg/dL.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Kadar  oksigen  terlarut  pada  setiap waktu  pengukuran  cenderung  semakin menurun  disebabkan  oleh  respirasi  ikan, karena  dalam  suatu  wadah  tertutup  dan terbatas,  tekanan  oksigen  terus  menurun akibat pengambilan oksigen secara kontinyu  oleh  ikan.  Pada  jam  ke-3
pengukuran,  terlihat  bahwa  konsentrasi oksigen sedikit naik, disebabkan oleh bohr effect. Pada  konsentrasi  oksigen  tinggi, hemoglobin  (Hb)  berkombinasi  dengan oksigen (O 2 ) menjadi bentuk oksihemoglobin (HbO 2 ) dan reaksi bergerak  ke  kanan,  sebaliknya  pada konsentrasi oksigen rendah, molekul oksigen diputuskan dan reaksi bergerak ke kiri.  Jika  oksigen  terus  berkurang  hingga nol, hemoglobin melepaskan semua oksigen.  Hal  ini  berarti  jumlah  oksigen yang berkombinasi dengan darah ditentukan oleh tekanan parsial oksigen. Hasil  penelitian  menunjukkan  nilai tingkat  konsumsi  oksigen  1  jam  hingga  5 jam  (Gambar  1)  secara  umum  cenderung mengalami  penurunan,  disebabkan  oleh semakin  berkurangnya  kadar  oksigen terlarut,  artinya  ada  hubungan  kandungan oksigen  terlarut  dengan  pengambilan oksigen (respiratory  dependence). Laju pengambilan  oksigen  menurun  saat  kadar oksigen  terlarut  dalam  air  berkurang (penurunan respirasi sejajar dengan penurunan  tekanan    oksigen  dalam  air). Diduga ikan brek berusaha mengembangkan  respons  adaptif  terhadap keterbatasan  ketersediaan  biologis  oksigen untuk  metabolisme,  meskipun  demikian ada  variabilitas  antar  individu  ikan  brek dalam mengekspresikan pemanfaatan energi metabolisme dengan aktivitas metabolisme  yang  berkaitan  erat  dengan pengambilan dan pemanfaatan oksigen.
Hasil  dari  uji  tingkat  konsumsi oksigen didapatkan nilai kebutuhan oksigen  per  gram  ikan  brek  pada  kisaran ukuran  1,93-4,29  g/ekor  berkisar  antara 0,09-0,77  mg  O 2 /g/jam  (Tabel  1).  Ikan brek  berukuran  kecil  cenderung  memiliki tingkat  konsumsi  oksigen  lebih  tinggi dibanding  ikan  brek  berukuran  besar,  hal ini mengindikasikan aktivitas metabolismenya. Oksigen terlarut merupakan  salah  satu  faktor  pembatas karena  diduga  dapat  mempengaruhi  laju metabolisme  pada  ikan.  Faturrohman (2017) menyatakan bahwa oksigen
e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022 berperan untuk membantu proses metabolisme sehingga menghasilkan energi  yang dapat digunakan dalam proses pertumbuhan.  Laju  metabolisme pada ikan berkaitan dengan respirasi karena ekstraksi energi  dan  molekul  makanan  dipengaruhi oleh  oksigen  (Putra,  2015).  Oksigen terlarut yang rendah diduga dapat mempengaruhi  pengambilan  pakan (food intake) sehingga  energi  pada  ikan  tidak terpenuhi secara maksimal. Penurunan
food intake yang dipengaruhi oleh rendahnya oksigen dalam dah pemeliharaan  secara  terus  menurus  dapat mempengaruh  laju  pertumbuhan  (Putra, 2015).  Oksigen  merupakan  salah  satu parameter kualitas air yang dapat mempengaruhi  laju  pertumbuhan,  tingkat kelangsungan  hidup,  dan  rasio  konversi pakan (Mallya, 2007). Oksigen sangat erat kaitannya dengan proses metabolisme pada tubuh  ikan  untuk  menghasilkan  energi. Metabolisme  merupakan  semua  perubahan atau transformasi kimiawi dan energi  yang terjadi  didalam  tubuh.  Rendahnya  oksigen terlarut  dalam  wadah  budidaya  akan
berpengaruh  pada  laju  metabolisme  pada tubuh  ikan,  sebab  energi  yang  didapatkan dari  hasil  metabolisme  akan  lebih  banyak dialokasikan untuk mempertahankan keadaan homeostasi aktif terhadap lingkungan yang kurang mendukung sehingga  energi  yang  digunakan  untuk pertumbuhan tidak maksimal.
Menurut  Gracia et  al. (2006)  tingkat konsumsi  oksigen  (TKO)  merupakan parameter  yang  menggambarkan  laju metabolisme organisme air. Parameter ini
menggambarkan hubungan antara penggunaan  energi  metabolisme  dengan aktivitas  metabolisme  yang  berlangsung. Oksigen  pada  tubuh  ikan  memiliki  peran penting dalam proses pembentukan energi. Mekanisme  pembentukan  energi  yang dimaksud  berupa  pemecahan  glukosa menjadi  energi  berupa  ATP  pada  respirasi aerob  melalui  bantuan  oksigen  (Salmin, 2005).  Menurut  penelitian  Faturrohman (2017)  pada  kepiting  bakau  semakin rendah  nilai TKO suatu  organisme menunjukkan  semakin  rendah  aktivitas metabolisme yang terjadi. Hal ini berkaitan dengan pembelanjaan energi untuk
Gambar 1. Grafik tingkat konsumsi oksigen ikan brek ( P. orphoides C.V)
e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022
digunakan  dalam  pertumbuhan  secara maksimal.  Pada  kondisi  oksigen  terlarut rendah,  ikan  cenderung  bergerak  lebih aktif  untuk  mendapatkan  oksigen  secara maksimal,  sehingga  berpengaruh  pada tingkat  konsumsi  oksigen.  Menurut  Li et al. (2007)  bahwa  peningkatan  konsumsi oksigen  pada  ikan  terjadi  apabila  adanya aktivitas bergerak yang lebih aktif sehingga  proses  respirasi  ikan  semakin tinggi.
Kepadatan ikan yang tinggi merupakan  faktor  kritis  karena  memiliki potensi  sebagai  sumber  stres,  salah  satu indikator  untuk  melihat  respons  stres adalah  nilai  kadar  glukosa  darah  yang disajikan  pada  Tabel  2.  Nilai  rata-rata kadar glukosa darah berkisar antara 49,33- 53  mg/dL,  untuk  perlakuan  A,  B  dan  C masing-  masing  53  mg/dL,  52,67  mg/dL dan  49,33  mg/dL  yang  cenderung  tidak berbeda  nyata.  Mazeaud  dan  Mazeaud (1981)  menyebutkan  bahwa  keberadaan glukosa  darah  ditentukan  oleh  stres. Hiperglisemia merupakan indikator terjadinya  stres  awal,  karena  tingkat glukosa  darah  sangat  sensitif  terhadap hormon  stres.  Pengukuran  glukosa  darah dilakukan  pada  saat  saluran  pencernaan kosong  (puasa  48  jam)  sehingga  tidak  ada lagi  pasok  glukosa  dari  pakan.  Kepadatan ikan  akan  mempengaruhi  fisiologi  dan perilaku ikan, mempengaruhi pertumbuhan dan  kelangsungan  hidup  ikan  (Luo et  al,. 2013; Niazie et al., 2013).
Stres adalah kondisi saat terganggunya keseimbangan  dinamis  dari  organisme (homeostasi)  sebagai  akibat  dari  faktor lingkungan. Respons terhadap stres dianggap  sebagai  mekanisme  adaptif  ikan untuk mempertahankan homeostasi (Bonga,  1997;  Barton,  2002).  Respons fisiologis  ikan  dalam  menghadapi  stres dibagi  atas  respons  primer,  sekunder  dan tersier  (Barton,  2002).  Respons  primer dicirikan  dengan  meningkatnya  hormon katekolamin  dan  kortikosteroid,  respons sekunder menyebabkan perubahan metabolisme  yaitu  peningkatan  kadar
glukosa, laktat, penurunan glikogen, gangguan  osmoregulasi,  serta  perubahan fungsi  imunitas  sedangkan  respons  tersier yaitu terjadinya perubahan performa hewan secara keseluruhan seperti pertumbuhan,  respons  imun,  ketahanan terhadap  penyakit  dan  perubahan  tingkah laku (Barton 2002; Nardocci et al., 2014). Indikator yang umum digunakan untuk melihat respons stres adalah kadar kortisol dan  glukosa  darah,  pada  keadaan  stres akut,  konsentrasi  kortisol  dapat  meningkat 10–100  kalinya  (Bonga,  1997).  Ikan memiliki  rentang  yang  luas  terhadap respons  stress  yaitu  bergantung  pada spesies  ikan,  jumlah  ikan  dalam  spesies yang  sama,  populasi,  ikan  liar,  faktor genetik,  tingkah  laku  (Barton,  2002). Respons stres dapat dilihat dari peningkatan  kadar  kortisol  dan  glukosa darah.  Hasil  penelitian  menunjukkan bahwa  glukosa  darah  memiliki  nilai  yang cenderung  rendah  pada  pengamatan  jam ke-72. Hal ini memperlihatkan bahwa ikan brek  mampu  beradaptasi  terhadap  potensi sumber  stres  berupa  padat  tebar.  Glukosa sangat penting untuk memenuhi kebutuhan energi yang tinggi akibat stres, karena stres akan  mengalihkan  energi  dari  proses metabolisme  normal  menjadi  energi  yang digunakan  untuk  mengaktifkan  sistem fisiologis  menghadapi  stres  (Andrade et al., 2015).
Menurunnya  kadar  glukosa  darah mengindikasikan
bahwa ikan memanfaatkan  energi  dari  glukosa  untuk merespons  dan  beradaptasi  terhadap  stres. Kemampuan  ikan  beradaptasi  terhadap lingkungan, lamanya dan besarnya respons stres  bergantung  pada  jenis  spesies, intensitas  dan  durasi  respons  (Bonga 1997).  Pada  ikan,  khususnya  spesies karnivora, umumnya justru terjadi fenomena  kadar  glukosa  darah  tinggi (hiperglisemia)  jangka  panjang  teramati bahkan  setelah  ikan  mengkonsumsi  pakan kaya  karbohidrat  (Cowey  dan  Walton 1989;  Wilson  1994;  Moon  2001).  Hal  ini mencerminkan  efek  lebih  kuat  (dominan)
e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022
dari  asam-asam  amino  dibanding  glukosa sebagai stimulator sekresi insulin
(Mommsen dan Plisetskaya 1991).
Menurut Watkins (2008), kebutuhan energi untuk  memperbaiki  homeostasi  selama stres  dipenuhi  oleh  proses  glikogenolisis dan  glukoneogenesis  yang  menghasilkan glukosa.
Kadar  glukosa  darah  dipertahankan homeostasinya  oleh  organ  hati  melalui metabolisme glukosa (Piliang dan Djojosoebagio, 2000). Beberapa mekanisme yang berperan dalam mempertahankan homeostasi glukosa darah  adalah  glikolisis,  glukoneogenesis, glikogenesis  dan  glikogenolisis    (Leung dan  Woo,  2012).  Homeostasi  glukosa dalam  darah  dipertahankan  oleh  beberapa hormon.  Insulin  merupakan  salah  satu
hormon  yang  berperan  menurunkan  kadar glukosa dalam darah. Terjadinya katabolisme  protein  untuk  membentuk glukosa  juga  menghasilkan  asam  amino, sehingga asam amino dalam darah mengalami  peningkatan.  Meningkatnya asam amino dalam darah akan mengaktivasi  insulin  kembali  sehingga mampu  melakukan  transpor  glukosa, sehingga  glukosa  dalam  darah  akan menurun kembali (Wendelaar, 1997).

## KESIMPULAN
Respons  stres  sekunder  berupa  kadar glukosa  darah  ikan  brek  ( P.  orphoides C.V)    pada  perlakuan  padat  tebar  2 ekor/0,02  m 2 ,  3  ekor/0,02  m 2 ,  4  ekor/0,02 m 2 dan  5  ekor/0,02  m 2 cenderung  rendah, oleh  karena  itu  dapat  direkomendasikan intensifikasi  budidaya  ikan  brek  dengan padat  tebar  berkisar  antara  100-250 ekor/m 2 .
Parameter Akrm 01 Akrm 02 Akrm 03 Akrm 04 Akrm 05 Akrm 06 Akrm 07 Akrm 08 Akrm 09 Akrm 10 DO  (mg/L)   awal   (24   jam setelah aerasi) 3,85 3,79 3,58 3,85 3,6 3,53 3,52 3,62 3,89 3,52 Bobot (g) ikan 1 1,03 0,78 2,12 1,15 1,18 1,31 2,36 2,08 1,21 2,36 Bobot (g) ikan 2 1,28 1,15 1,59 1,31 1,18 1,87 1,93 1,65 1,21 1,93 Total bobot (g) ikan 2,31 1,93 3,71 2,46 2,36 3,18 4,29 3,73 2,42 4,29 DO (mg/L)-1 jam 3,26 3,32 3,35 3,28 3,32 3,35 3,37 3,51 3,42 3,37 DO (mg/L)-2 jam 2,86 2,92 2,92 3,16 2,99 2,73 2,88 3,12 3,04 2,88 DO (mg/L)-3 jam 3,14 3,14 2,94 3,19 3,22 3,19 3,13 3,11 3,19 3,13 DO (mg/L)-4 jam DO (mg/L)-5 jam 3,11 3,09 3,08 3,05 2,85 2,73 2,77 2,19 2,99 2,12 2,75 2,73 3,04 2,88 2,86 2,04 3,38 2,12 3,04 2,29 TKO (mg O 2 /g/jam)-1 jam 0,77 0,73 0,19 0,73 0,36 0,17 0,12 1,09 0,61 0,12 TKO (mg O 2 /g/jam)-2 jam 0,64 0,68 0,27 0,42 0,39 0,38 0,22 0,24 0,53 0,22 TKO (mg O 2 /g/jam)-3 jam 0,31 0,34 0,17 0,27 0,16 0,11 0,19 0,14 0,29 0,09 TKO (mg O 2 /g/jam)-4 jam TKO (mg O 2 /g/jam)-5 jam 0,24 0,17 0,28 0,16 0,16 0,09 0,33 0,12 0,19 0,72 0,13 0,91 0,12 0,05 0,15 0,13 0,16 0,09 0,08 0,05
Tabel 1. Tingkat konsumsi oksigen ikan brek ( P. orphoides C.V)
Tabel 2. Glukosa darah ikan brek (P. orphoides C.V) jam ke-72 pasca stres padat tebar
Parameter/Perlakuan A1 A2 A3 B1 B2 B3 C1 C2 C3 Total bobot (g) ikan 3,74 4,2 2,65 9,17 5,86 3,61 14,16  12,66 4,63 Bobot  (g) ikan  untuk  uji glukosa darah 2,95 2,32 1,93 2,49 1,56 1,24 3,7 2,15 1,99 Glukosa darah (mg/dL) 57 75 49 31 73 54 36 40 72

## UCAPAN TERIMA KASIH
Riset penulis dibiayai oleh Pendanaan Penelitian Program  Kompetitif Nasional  Skema  :  Penelitian  Dosen Pemula  Tahun  Anggaran  2022  No. 0267/E5/AK.04/2022 dengan No. Kontrak 156/E5/PG.02.00.PT/2022.  Ucapan  terima kasih  kepada  Direktur  Riset,  Teknologi, dan  Pengabdian  Kepada  Masyarakat Kemdikbudristek, Lembaga Layanan
Pendidikan  Tinggi  Wil.  IV,  LPPM
Universitas Nahdlatul Ulama Cirebon, dan Program Studi Budidaya Perikanan,
Fakultas Teknologi dan Perikanan (FTKP).

## DAFTAR PUSTAKA
Andrade  T,  Afonso  A,  Peres-Jimenez  A,
Oliva-  Teles  A,  de  Las  Heras  V, Mancera  JM,  Serradeiro  R,  Costas  B.
2015.  Evaluation  of  different  stocking densities  in  a  Senegalese  sole (Solea senegalensis) farm:  Imlicationa  for growth,  humoral  immune    parameters and  oxidative  status. Aquaculture 438:
6-11.
Barton  BA.  2002. Stress  in  fishes:  A diversity  of  responses  with  particular reference  to  changes  ini  circulating corticostreroids. Integrative and Comparative Biology 42: 517-525.
Berka  R.    1986. The    transport    of    live fish. EIFAC Tech. Pap. No. 48. p.52. Bonga  SEW.  1997.  The  stress  response  in fish.  Physiological  Reviews  77  (3): 591-625.
Brown  JA.  1993. Endocrine  Responses  to Environmental  Pollutions ,  p:  276-292. In  J.F.  Rankin  &  F.B.  Jemsen  (Eds.). Fish Ecophy-siology. Chapman & Hall, London.
Cowey CB, Walton MJ. 1989. Intermediary  metabolism.  In:  Halver JE (ed) Fish nutrition. Academic Press,
San Diego, pp 260–329.
Faturrohman  K.  2017.  Penentuan  kadar oksigen terlarut optimum untuk
pertumbuhan  benih  kepiting  bakau Scylla serrata dalam sistem resirkulasi. [Tesis].  Bogor  (ID):  Institut  Pertanian Bogor.
Fujaya  Y.  1999. Fisiologi  Ikan  Dasar Pengembangan  Teknik  Perikanan .  PT Rineka Cipta. Jakarta.
Gracia  LA,  Rosas  VC,  Brito  PR.  2006.
Effects  of  salinity  on  physiological conditions  in  juvenile  common  snook
Centropomus undecimalis .Comparative Biochemistry
and Physiology . 145:340–45.
Julian, William GR, Stephanie EW, Albert
JS.  2003.  Oxygen  Consumption  in weakly  electric  neotropical  fishes. Journal  of  Oecologia  2003,  137:502- 511.
Leung  LY,  Woo  NYS.  2012.  Influence  of dietary carbohydrate level on endocrine status and hepatic carbohydrate metabolism  in  the  marine  fish  Sparus sarba.  Fish  Physiol  Biochem  38:543- 554.
Li E, Chen L, Zeng C, Chen X, Yu N, Lai Q,  Qin  JG.  2007.  Growth,  body composition,  respiration  and  ambient ammonia  nitrogen  tolerance  of  the juvenile  white  shrimp  Litopenaeus vannamei at different salinities.
Elsevier Aquaculture. 265:385‒390.
Luo  G,  Liu  G,  Tan  H.  2013.  Effect  of stocking  density  and  food  deprivation- related  stress  on  the  physiology  and growth  in  adult  Scortum  barcoo (McCulloch  &  Waite).  Aquaculture Research 44 (6): 885-894.
Mallya  YJ.  2007.  The  effects  of  dissolved oxygen  on  fish  growth  in  aquaculture. UNU-Fisheries  Training  Programme. Tanzania.
Mazeaud MM, Mazeaud F. 1981. Andrenergic responses to stress in fish, p:  49-75.  In  A.D.  Pickering.  (Ed.). Stress  and  Fish.  Academic  Press,
London.
Mommsen  TP,  Plisetskaya  EM.  1991.
Insulin in fishes and agnathans: history,
e-ISSN : 2656-7474 DOI:https://doi.org/10.47685/barakuda45.v4i2.275 2022
structure and metabolic regulation. Rev Aquat Sci 4:225– 259. Setyaningrum,  N.  dan  Santoso,  M.  2008. Penggunaan  Kelenjar  Hipofisa  dan Ovaprim  untuk  Memacu  Pemijahan
Ikan  Brek  ( Puntius  orphoides CV). Jurnal Ilmu-Ilmu Perairan (11):201-208 Setyaningrum, N., dan A. Nuryanto. 2006.
Penjinakan  dan  Budidaya  Ikan  Brek ( Puntius  orphoides )  Sebagai  Upaya menuju  Diversifikasi  Usahatani  Ikan. Jurnal Pembangunan Pedesaan (6): 25- 31.