https://journal.ipb.ac.id/index.php/jurnalikt
e-ISSN   : 2620-309X

## IDENTIFIKASI MIKROALGA LAUT POTENSIAL SEBAGAI BAHAN BAKU BIODIESEL DI KECAMATAN BANDA SAKTI KOTA LHOKSEUMAWE

## IDENTIFICATION OF POTENTIAL MARINE MICROALGAES AS BIODIESEL RAW MATERIALS IN BANDA SAKTI DISTRICT, LHOKSEUMAWE CITY
Erlangga, Yudho Andika * , Imanullah, Imamshadiqin, Alfi Syahrin, Dodi Fanhalen Siregar & Syahrul Ramadansyah
Program Studi Ilmu Kelautan, Fakultas Pertanian, Universitas Malikussaleh,
Aceh Utara, 24355, Indonesia *E-mail: yudhoandika@unimal.ac.id

## ABSTRACT
Many  studies  have been  carried  out  to find  potential alternative  energy  sources from  renewable  and environmentally friendly materials due to the depletion of fossil energy sources. One of the efforts to increase  energy  independence  is  to  prepare  potential  alternative  fuels  derived  from  microalgae. Banda  Sakti  District  has  the  potential  of  coastal  and  marine  resources  that  have  not  been  studied much,  one  of  which  is  microalgae. The  purpose  of  this  study  was  to determine  the type  of  microlaga that  has  the  potential  as  raw  material for  biodiesel  in  Banda  Sakti  District,  Lhokseumawe  City.  The research  was  carried  out  in  October  –  November  2021  in  the  Sea  Waters  of  Banda  Sakti  District, Lhokseumawe City using purposive sampling method. Found as many as 143 types of microalgae and found  4  types  of  microalgae  that  have  been  developed  as  biodiesel  material,  namely  Cholera  sp., Spirulina  sp.,  Nitzschia  sp.,  and  Chaetoceros  sp..  The  most  abundant  type  of  microalgae  is Raphidonema  sp.,  this  species  needs  to  be  investigated  further  to  see  its  potential  as  a  biodiesel feedstock.  The  total  abundance  of  microalgae  ranged  from  350.00–561.11  ind/L.  The  water  quality parameter  values  are  still  in  good  condition  for  microalgae  life.  The  marine  waters  of  Banda  Sakti District, Lhokseumawe City have the potential for microalgae to be developed as biodiesel feedstock.
Keywords: Banda Sakti, biodiesel, microalgae, Raphidonema sp.

## ABSTRAK
Banyak penelitian yang telah dilakukan untuk menemukan potensi sumber energi alternatif dari bahan- bahan yang dapat diperbarui dan ramah lingkungan akibat dari menipisnya sumber energi fosil.  Salah satu upaya dalam meningkatkan kemandirian energi adalah dengan menyiapkan bahan bakar alternatif potensial  yang  berasal  dari  mikroalga.  Kecamatan  Banda  Sakti  memiliki  potensi  sumberdaya  pesisir dan  lautan  yang  belum  banyak  dikaji,  salah  satunya  adalah  mikroalga.  Tujuan  penelitian  ini  untuk mengetahui jenis mikroalga yang berpotensi sebagai bahan baku biodiesel di Kecamatan Banda Sakti Kota  Lhokseumawe.  Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  Oktober  –  November  2021  di  Perairan  Laut Kecamatan  Banda  Sakti,  Kota  Lhokseumawe  dengan  menggunakan  metode purposive  sampling . Ditemukan sebanyak 143 jenis  mikroalga dan ditemukan 4 jenis  mikroalga yang telah dikembangkan sebagai  bahan  biodiesel  yaitu Cholera sp., Spirulina sp., Nitzschia sp.,  dan Chaetoceros sp.  Jenis mikroalga  yang  paling  melimpah  yaitu Raphidonema sp.,  jenis  ini  perlu  diteliti  lebih  lanjut  untuk melihat  potensi  sebagai  bahan  baku  biodiesel.  Kelimpahan  total  mikroalga  berkisar  antara  350,00– 561,11 ind/L. Nilai parameter kualitas perairan masih dalam kondisi baik untuk kehidupan mikroalga. Perairan  laut  Kecamatan  Banda  Sakti,  Kota  Lhokseumawe  memiliki  potensi  mikroalga  untuk dikembangkan sebagai bahan baku biodiesel.
Kata kunci: Banda Sakti, biodiesel, mikroalga, Raphidonema sp.

## I. PENDAHULUAN
Pemenuhan  kebutuhan  bahan  bakar energi  saat  ini  masih  bergantung  pada  bahan bakar yang berasal dari fosil dan tidak ramah lingkungan  (Gultom,  2018).  Meningkatnya permintaan  energi,  pemanasan  global  akibat emisi gas rumah kaca, pencemaran lingkungan  dan  pasokan  bahan  bakar  fosil yang  cepat  berkurang  merupakan  faktor kunci  utama  yang  mengarah  pada  pencarian sumber  energi  alternatif  (Atadashi,  2011). Banyak penelitian yang telah dilakukan untuk menemukan  potensi  sumber  energi  alternatif dari  bahan-bahan  yang  dapat  diperbarui  dan ramah  lingkungan  akibat  dari  menipisnya sumber energi fosil (Ravanipour et al., 2021). Alternatif  penggunaan  bahan  bakar  yang ramah lingkungan, mutlak untuk dikembangkan.  Pilihan  bahan  bakar  biofuel seperti  biodiesel  akan  menjadi  pilihan  di masa  depan  (Thapa et  al., 2018).  Biodiesel merupakan bioenergi bersih terbarukan karena  dapat  dihasilkan  dari  minyak  nabati. Karakteristik  biodiesel  hampir  mirip  dengan solar sehingga menjadi alternatif untuk bahan bakar  diesel  (Abbaszaadeh,  2012).  Biodiesel dari  minyak  tumbuhan  seperti  jagung, kedelai,  jarak  dan  kelapa  sawit  memiliki kekurangan  yaitu  masa  panen  yang  lama. Substitusi  minyak  dari  minyak  jagung, kedelai,  dan  minyak  kelapa  sawit  akan berbenturan  dengan  kepentingan  konsumsi pangan manusia (Ari et al., 2019). Salah satu upaya  dalam  meningkatkan  kemandirian energi  adalah  dengan  menyiapkan  bahan bakar  alternatif  potensial  yang  berasal  dari mikroalga (Halim et al., 2011).
Mikroalga memiliki beberapa keunggulan  dibandingkan  dengan  tanaman lainnya.  Keunggulan  mikroalga  yaitu  dapat diperbarui secara cepat, kandungan lipid yang tinggi,  ramah  lingkungan,  nilai  emisi  yang rendah,  dan  mampu  mengurangi  emisi  gas karbondioksida  (CO 2 )  (Musdalifah et  al., 2015).  Proses hydrothermal  liquefaction (HTL)  dianggap  sebagai  salah  satu  proses termokimia  yang  potensial  untuk  mengubah
biomassa  mikroalga  menjadi  minyak  mentah (bio-crude  oil) (Valdez et  al., 2014). Bio- crude oil merupakan senyawa yang mengandung  berbagai  hidrokarbon  yang mirip dengan minyak bumi (Gai et al., 2012). Gouveia  &  Oliveira  (2009)  menyatakan mikroalga  memiliki  kandungan  asam  lemak. Komposisi  asam  lemak pada  mikroalga  yang sangat  bervariasi  menyebabkan  karakteristik biodiesel yang dihasilkan juga beragam.
Mikroalga merupakan tumbuhan renik  berukuran  mikroskopik  yang  termasuk dalam  kelas  alga  dan  hidup  sebagai  koloni maupun sel tunggal di seluruh perairan tawar maupun laut  (Purbani et  al., 2010). Mikroalga  laut  merupakan  produsen  primer yang  mampu  berfotosintesis  dan  berperan dalam  rantai  makanan  sehingga  keberadaan mikroalga  menjadi  sangat  penting  (Kawaroe, 2010).  Mikroalga  yang  peling  banyak ditemukan berasal dari kelas Bacillariophyceae (diatom), Chrysophyceae (alga  cokelat  keemasan),  Chlorophyceae (mikroalga hijau) dan Cyanophyceae (mikroalga biru-hijau). Mikroalga laut memiliki  karakteristik  yang  berbeda-beda, diantaranya perbedaan pada tipe jaringan sel, ukuran  sel,  morfologi  sel,  dan  warna  sel (Mercer  &  Armenta,  2011).  Penelitian sebelumnya  telah  melihat  potensi  kandungan lemak  pada  mikroalga  (Rozana et  al., 2020), spesies Chlorella  vulgaris (Praharyawan  & Rachmayati,  2021)  dan  kandungan  lemak mikroalga  hijau  (Bahagia  &  Viena,  2019). Sadvakasova et al. (2019) juga mengidentifikasi  mikroalga  jenis  baru  dan menemukan  jenis Scеnеdеsmus  obliquus sp. yang berpotensi sebagai bahan baku biodiesel.  Besarnya  potensi  perairan  di Indonesia  baik  tawar  maupun  laut  dan kondisi iklim tropis dengan cahaya mataharinya  sangat  sesuai  untuk  kehidupan mikroalga.
Kecamatan  Banda  Sakti  merupakan salah  satu  kecamatan  yang  berada  di  Kota Lhokseumawe.  Kecamatan  Banda  Sakti memiliki  potensi  sumberdaya  pesisir  dan lautan  yang  belum  banyak  dikaji,  salah
satunya  adalah  mikroalga.  Oleh  karena  itu untuk  mengetahui  jenis  mikroalga  yang berpotensi  sebagai  bahan  biodiesel  di Kecamatan  Banda  Sakti  Kota  Lhokseumawe perlu  adanya  kajian  identifikasi  jenis  dan kelimpahan  mikroalaga.  Data  yang  diperoleh dari  penelitian  ini  akan  dikembangkan sebagai  bahan  baku  energi  terbarukan khususnya di Kota Lhokseumawe.

## II. METODE PENELITIAN

## 2.1. Waktu dan Lokasi Penelitian
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan Oktober  dan  November  2021  di  Perairan Laut Kecamatan Banda Sakti Kota Lhokseumawe  (Gambar  1).  Metode  yang digunakan  yaitu  metode purposive sampling. Penelitian ini terdiri dari 4 stasiun pengambilan  sampel.  Stasiun  1  berada  di muara  Sungai  Pusong  adanya  masukan limbah  organik  maupun  anorganik,  stasiun  2 berada  di  Pantai  Pusong  yang  merupakan kawasan  wisata  dan  dermaga  perikanan, stasiun  3  berada  di  Pantai  Hagu  yang merupakan  kawasan  wisata  pantai  berpasir dan stasiun 4 berada di keramba jaring apung Loskala  yang  merupakan  kawasan  keramba jaring apung. Pemilihan lokasi ini didasarkan pada  kondisi  wilayah  Kecamatan  Banda
Sakti  yang  terdiri  dari  wilayah  laut  dan muara  sungai,  sehingga  penentuan  4  titik stasiun  memenuhi  kriteria  dan  semua keadaan lapangan.

## 2.2. Pengambilan Sampel dan Identifikasi Mikroalga
Sampel  mikroalga  diambil  dengan interval  1  minggu  sekali  sebanyak  2  kali pengambilan  sampel  menggunakan  plankton net. Sebanyak 12 L air diambil menggunakan ember  plastik  pada  jarak  20  m  dari  pinggir muara dan 50  m dari pantai pada kedalaman 2  m,  kemudian  disaring  menggunakan plankton  net  hingga  diperoleh  sebanyak  50 ml pada botol sampel dan diberi larutan lugol sebanyak  sebanyak  2  ml.  Sampel  diambil sebanyak 3 kali pengulangan pada setiap titik stasiun.  Pengamatan  identifikasi  mikroalga secara  morfologi  mengacu  pada  Yamaji (1979) di bawah mikroskop cahaya Olympus BX5 yang telah dihubungkan dengan kamera Olympus  DP26  dan personal  computer dengan  aplikasi CellSens  Standart dimulai dari  perbesaran  kecil  hingga  perbesaran  100 kali  dilakukan  di  Laboratorium  Oseanografi Universitas Malikussaleh menggunakan haemocytometer kemudian jumlah mikroalga yang terlihat dicatat.
Gambar 1.  Lokasi penelitian dan stasiun pengambilan sampel mikroalga. (Sumber: Bingmaps satelit ).
2.3. Kelimpahan Mikroalga
Kelimpahan mikroalga dihitung berdasarkan  rumus  APHA  (1989)  sebagai berikut:
................................... (1) Keterangan: N : Jumlah sel per liter (Ind/L) n : Jumlah sel yang teridentifikasi (Ind) V r : Volume air yang tersaring (ml) V 0 : Volume air yang diamati (ml) V s
: Volume air yang disaring (L)

## 2.4. Indeks Keanekaragaman,
Keseragaman dan Dominansi Indeks  keanekaragaman  Shannon- Wienner (Odum, 1996) dihitung menggunakan rumus: ................................ (2)
Keterangan :
H’ : Indeks keanekaragaman
P i
: Proporsi  individu  dari  jenis  i terhadap  jumlah  individu  semua jenis ( P i = n i /N ) n i : Jumlah individu /spesies /jenis N : Jumlah individu keseluruhan
Indeks keseragaman
Shannon-Wienner (Odum, 1996) dihitung menggunakan rumus:
................................................. (3)
Keterangan :
E : Indeks keseragam jenis
H’ : Indeks keanekaragaman
S : Jumlah spesies
Indeks dominansi Shannon-Weanner (Odum, 1996) dihitung menggunakan rumus:
........................................... (4)
Keterangan :
P i : Proporsi  individu  dari  jenis  i terhadap  jumlah  individu  semua jenis ( P i = n i /N )

## 2.5. Parameter Kualitas Perairan
Pengukuran  parameter  kualitas  air dilakukan  dengan  cara in-situ .  Parameter kualitas  air  yang  diukur  secara in-situ meliputi  suhu,  pH,  salinitas,  oksigen  terlarut dan kecerahan perairan.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1. Jenis Mikroalga
Total jenis mikroalga yang ditemukan pada  bulan  Oktober  sebanyak  143  jenis  dan pada  bulan  November  sebanyak  128  jenis. Hasil pengamatan bulan Oktober pada stasiun 1  ditemukan  sebanyak  75  jenis  mikroalga dengan spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga jenis Raphidonema sp.  sebanyak  28  individu, Chaetopora sebanyak  24  individu  dan Calothrix  elsteri sebanyak  11  individu.  Pada stasiun  2  ditemukan  sebanyak  65  jenis mikroalga dengan spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga jenis Raphidonema sp.  sebanyak  77  individu, Chroococcales sebanyak  44  individu  dan Calothrix  elsteri sebanyak  24  individu.  Pada stasiun  3  ditemukan  sebanyak  60  jenis mikroalga dengan spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga jenis Raphidonema sp.  sebanyak  72  individu, Grodynium sp.  sebanyak  52  individu  dan Oukopleura  albicans sebanyak  25  individu. pada  stasiun  4  ditemukan  sebanyak  67  jenis mikroalga dengan spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga jenis Raphidonema sp.  sebanyak  73  individu, Gryodinium sp.  sebanyak  59  individu  dan Chaetophora sebanyak 30 individu.
Hasil  pengamatan  bulan  November pada  stasiun  1  ditemukan  sebanyak  50  jenis mikroalga dengan spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga jenis Raphidonema sp.  sebanyak  59  individu, Chaetopora sebanyak  36  individu  dan
Tabel 1. Jenis mikroalga yang ditemukan pada bulan Oktober.
No Stasiun 1 Kelimpa han Ind/L
Stasiun 2 Kelimpa han Ind/L Stasiun 3 Kelimp ahan Ind/L Stasiun 4 Kelimp ahan Ind/L 1 Ankistrodesmus 1,39 Anabaena 1,39 Amphisolenia asymmetrica 4,17 Anabaena 1,39 2 Atlanta fusca 1,39 Ankistrodesmus 1,39 Ankistrodesm us 2,78 Aulacoseira sp. 1,39 3 Bacillaria paxillifer 1,39 Aulacoseira sp. 1,39 Brachionus plicatilis 1,39 Calothrix elsteri 25,00 4 Brachionus plicatilis 1,39 Calothrix elsteri 33,33 Calanoid copepods 4,17 Cestum amphitrites 6,94 5 Calanoid copepods 1,39 Carinaria cristata 1,39 Calothrix 1,39 Chaetophora 41,67 6 Calothrix elsteri 15,28 Cestum amphitrites 5,56 Ceratium extensum 1,39 Chaetopora sp. 1,39 7 Carinaria cristata 1,39 Chaetophora 23,61 Cestum amphitrites 2,78 Charybdea rastoni 1,39 8 Ceratium azoricum 1,39 Chonchoecia procera 1,39 Chaetoceros capense 1,39 Chroococcales 29,17 9 Ceratium extensum 1,39 Chroococcales 61,11 Chaetoceros setoensis 1,39 Chyphonautes larvae 1,39 10 Cestum amphitrites 8,33 Closteriopsis 1,39 Chaetophora 19,44 Ciona intestinalis 1,39 11 Chaetoceros capense 1,39 Closterium 1,39 Chroococcale s 12,50 Closteriopsis 1,39 12 Chaetoceros didymus 1,39 Conchoecia magna 4,17 Cillatoria 1,39 Conchoecia magma 4,17 13 Chaetoceros sp. 1,39 Conchoecia rotundanata 1,39 Ciona intestinalis 2,78 Conchoecia procera 1,39 14 Chaetophora 33,33 Cylops 1,39 Colothrix elsteri 6,94 Conchoecia rotundata 1,39 15 Chaoborus larvae 4,17 Eughlena 2,78 Conchoecia magna 6,94 Cresis acicula 1,39 16 Chlorella sp. 4,17 Eutreptiella gymnastica 2,78 Conchoecia rotundanata 8,33 Cyanobacteria 1,39 17 Chroococcales 9,72 Geitlerinema anagnostidinema 1,39 Cyphonaulete s larvae 1,39 Cypridina socilluca 4,17 18 Cillatoria 1,39 Geitlerinema sp. 2,78 Eunotia 1,39 Engraulis mordax 5,56 19 Conchoecia magna 2,78 Gyrodinium sp. 5,56 Grodynium sp. 72,22 Eutintinnus turris 1,39 20 Conchoecia procera 1,39 Gyrodinium spirale 1,39 Hemiaulus hauckii Grunow 1,39 Evadne nordmanni 1,39 21 Conchoecia rotundanata 5,56 Hemiaulus hauckii Grunow 1,39 Leptocylindri cus sp. 1,39 Fragilaria cylindrus 1,39 22 Cresis acicula 1,39 Leptolyngbya fragilis 2,78 Leptolyngbya fragilis 4,17 Fragilaria oceanica 2,78 23 Cyphonautes larva 1,39 Leptolyngbya henningsii 6,94 Leucothea sp. 1,39 Globigerina rubescense 1,39 24 Dinoflagelados desnudos 5,56 Leucothea sp. 1,39 Lingbya 1,39 Gonatozygon 1,39 25 Dinophysis 1,39 Lionuts Cygnus 1,39 Lionotus cygnus 2,78 Gryodinium sp. 81,94 26 Dinophysis acumonita 6,94 Microspora 4,17 Lopdorrhyncu s apendiculatus (Phyto) 8,33 Hemiaulus hauckii Grunow 1,39 27 Emitic eggs 1,39 Navicula distans 1,39 Melosira 5,56 Leptolyngbya fragilis 6,94 28 Engraulis mordax 1,39 Navicula sp. 2,78 Microspora 1,39 Leptolyngbya henningsii 4,17 29 Eutintinnus turris 1,39 Nematodes 1,39 Monostyla quadridentata 1,39 Lionotus Cygnus 12,50
30 eutreptiella gymnastica 4,17 Nitchia sp. 6,94 Mougeotia 1,39 Lismophora sp . 1,39
31 Evadne nordmanni 1,39 Nitzchia sigma 1,39 Navicula distans 2,78 Lopdonhyncus apendiculatus 8,33 32 Fragilaria cylindrus 1,39 Oedaganium 1,39 Nitzschia sp 5,56 Lyngbya 1,39
No Stasiun 1 Kelimpa han Ind/L
Stasiun 2 Kelimpa han Ind/L Stasiun 3 Kelimp ahan Ind/L Stasiun 4 Kelimp ahan Ind/L 33 Gyrodinium instriatum 9,72 Oikopleura sp. 5,56 Oikopleura sp. 5,56 Melosira italica 1,39 34 Gyrodinium kofoid 4,17 Oscillatoria princeps 4,17 Oscillatoria 1,39 Microspora 1,39 35 Hemiaulus hauckii Grunow 1,39 Oscillatoriales 18,06 Oscillatoria sp . 2,78 Navicula 1,39 36 Hemiaulus sinensis 2,78 Oukopleura 5,56 Oscillatoriale s 16,67 Nematodesa 4,17 37 Lepadella ovalis 1,39 Oukopleura albicans 9,72 Oscillatoriale s sp. 2,78 Nitzschia  sigma 2,78 38 Leptocylindricus sp. 2,78 Oxyrrhis marina 26,39 Oukopleura albicans 34,72 Nitzschia lanceolata 1,39 39 Leptolyngbya fragilis 6,94 Phacus 1,39 Oxyrrhis marina 9,72 Oedaganium 4,17 40 Lingbya 1,39 Phormidium sp. 4,17 Phormodium 1,39 Oikopleura sp. 4,17 41 Lionotus Cygnus 5,56 Pleurosigma sp. 1,39 Pleurosigma balticum 2,78 Oscillatoria princeps 8,33 42 Microspora 2,78 Pleurotaenium 1,39 Pleurosigma sp. 1,39 Oscillatoria sp. 19,44 43 Monostyla quadridentata 1,39 Prepedinium meunieri 1,39 Polychaeta 1,39 Oscillatoriales 26,39 44 Navicula distans 1,39 proboscia alata 2,78 proboscia alata 4,17 Oukopleura albicans 30,56 45 Navicula sp . 8,33 Prorocentrum micans 2,78 protoperidini um subinerme 1,39 Oxyrrhis marina 8,33 46 Nitzchia sigma 1,39 protoperidinium conicoides 1,39 Pseduonitzchi a pungens 15,28 Palagonemeeries moseleyi 4,17 47 Nitzschia autralis 2,78 Protoperidinium pentagonum 2,78 Pseudo nitzschia australis (Phyto) 1,39 Phacus 1,39 48 Nitzschia linearis 1,39 Pseduonitzschia pungens 9,72 Pseudo- nitzschia sp. 1,39 Phormidium sp. 6,94 49 Nitzschia sp. 18,06 Pseudo-nitzschina australis 5,56 Pterosona planum 1,39 Proboscia alata 9,72 50 Oceanides 1,39 Pterosona planum 1,39 Pterotrachea 1,39 Pseduonitzschia pungens 2,78 51 Oikopleura albicans 8,33 Pterotrachea hippocampus 1,39 Pterotrachea hippocampus 4,17 Pseudo nitzschia australis 1,39 52 Oikopleura sp. 8,33 Pterotrachea minuta 2,78 Raphidonema 4,17 Pterosona planum 1,39 53 Oscillatoria princeps 12,50 Raphidonema sp. 106,94 Raphidonema sp. 100,00 Pterotrachea hippocampus 4,17 54 Oscillatoria sp. 5,56 Rhapidonema 5,56 Rhizosolenia sp. 5,56 R. setigera 1,39 55 Oscillatoriales 9,72 Rhizosolenia Hebetata 4,17 Rillerisella picteli 1,39 Raphidonema 13,89 56 Oxyrrhis marina 13,89 Rillerisella picteli 1,39 Skeletonema 1,39 Raphidonema sp. 101,39 57 Pelagonemeries moseleyi 1,39 Spirogyra 2,78 Spirostomum 1,39 Rhizosolenia clevei 9,72 58 Pinnularia 1,39 Spirulina subsala 1,39 Synedra sp. 1,39 Rhizosolenia cylindrus cleve 1,39 59 Pretotrachea minuta 1,39 Steenstrupiella steenstrupii 1,39 Tintinnopis tocantinensis 1,39 Rhizosolenia delicatula 8,33 60 Proboscia alata 1,39 Straustum 1,39 Viridiplantae 1,39 Rhizosolenia sp. 2,78 61 Protoperidinium denticulatum 1,39 Synedra sp. 4,17 Sagitta enflata Grassi 1,39 62 Pseduonitzschia pungens 11,11 Thalassionema nitzschioides 2,78 Steenstrupiella steenstrupii 2,78 63 Pseudo-nitzschia sp. 1,39 Trichocerca marina 1,39 Surirella sp. 1,39 64 Pterosona planum 1,39 Umezakia natans 5,56 Synedra sp. 2,78
65 Pterotrachea
1,39 Valiger larvae 2,78 Triceratium robertsianum 1,39 66 Pterotrachea hippocampus 4,17 Trichocerca marine 5,56 67 Raphidonema sp. 38,89 Zygnema 1,39
No Stasiun 1 Kelimpa han Ind/L
Stasiun 2 Kelimpa han Ind/L Stasiun 3 Kelimp ahan Ind/L Stasiun 4 Kelimp ahan Ind/L 68 Rhizosolenia clevei 4,17
69 Rhizosolenia delicatula
1,39
70 Rillerisella picteli 1,39 71 Sagitta enflata Grassi 4,17
72 Synedra sp. 1,39
73 Thalassiosira eccentric 1,39
74 Unidentified Tintinnid 6,94 75 Valiger larvae 1,39
Synedra sp.  sebanyak  33  individu.  Hasil pengamatan  pada  stasiun  2  ditemukan sebanyak  45  jenis  mikroalga  dengan  spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga  jenis Gloeocapsa sp.  sebanyak  49 individu Raphidonema sp.  sebanyak  39 individu,  dan Chaetopora sebanyak  38 individu.  Hasil  pengamatan  pada  stasiun  3 ditemukan  sebanyak  58  jenis  mikroalga dengan spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga jenis Raphidonema sp.  sebanyak  112  individu, Chaetopora sebanyak  29  individu  dan Raphidonema nivale sebanyak  28  individu. Hasil  pengamatan  pada  stasiun  4  ditemukan sebanyak  46  jenis  mikroalga  dengan  spesies yang paling banyak ditemukan yaitu mikroalga  jenis Raphidonema sp.  sebanyak 127  individu, Chaetopora sebanyak  20 individu  dan Chalothrix  elsteri sebanyak  18 individu.
Jenis  mikroalga  yang  paling  banyak ditemukan  adalah  jenis Raphidonema sp., belum  ada  penelitian  dan  informasi  lebih lanjut  mengenai  jenis Raphidonema sp. bisa dijadikan sebagai bahan baku untuk biodiesel . Yakimovich et  al. (2021)  baru meneliti  tentang  analisis  molekular  pada mikroalga  jenis Raphidonema sp.  Beberapa spesies  mikroalaga  yang  berpotensi  menjadi bahan  biodiesel  telah  ditemukan  di  perairan Kecamatan Banda Sakti Kota Lhokseumawe, meskipun  jumlah  jenis  dan  kelimpahannya tidak banyak.  Hasil  pengamatan pada stasiun 1 ditemukan  jenis Nitzschia sp. , pada stasiun
2 ditemukan  jenis Nitzschia sp., pada stasiun 3  ditemukan  jenis Spirulina sp.,  dan Chaetoceros sp.  dan  pada  stasiun  4 ditemukan  jenis Nitzschia sp . Kawaroe et  al. (2010)  menyebutkan  jenis  mikroalga  yang dapat  dijadikan  bahan  untuk  bahan  bakar yaitu jenis Botryococcus braunii, Chaetoceros sp. , Cholera sp. , Dunaliella sp. , Isochrysis sp. , Nannochloropsis sp. , Nitzschia sp. , Phaeodactylum sp. , Porpyridium cruentum,  Scenedesmus sp. ,  Spirulina sp. , dan Tetraselmis sp. . Nitzschia sp. adalah jenis mikroalga yang memiliki kemampuan adaptasi  yang  tinggi  terhadap  lingkungan (Israwati et al ., 2018).

## 3.2. Kelimpahan Mikroalga
Hasil pengamatan, didapatkan kelimpahan  total  mikroalga  berkisar  antara 350,00–561,11 ind/L (Gambar 2).
Kelimpahan  jenis  mikroalga  pada  stasiun  1 berkisar antara 1,38–38,88 ind/L, kelimpahan jenis mikroalga pada stasiun 2 berkisar antara 1,38–106,94 ind/L, kelimpahan jenis mikroalga  pada  stasiun  3  berkisar  antara 1,38–100,00 ind/L, kelimpahan jenis mikroalga  pada  stasiun  4  berkisar  antara 1,38–101,38  ind/L.  Hasil  pengamatan  bulan November  didapatkan  kelimpahan  total mikroalga  berkisar  antara  356,94–409,72 ind/L.  Kelimpahan  jenis  mikroalga  pada stasiun  1  berkisar  antara  1,38–81,94  ind/L, kelimpahan  jenis  mikroalga  pada  stasiun  2 berkisar antara 1,38–68,05 ind/L, kelimpahan jenis mikroalga pada stasiun 3 berkisar antara
Gambar 2. Kelimpahan total spesies mikroalga di setiap stasiun dalam dua bulan.
Tabel 2. Persentase kelimpahan jenis mikroalga pada masing-masing stasiun.
Jenis Mikroalga Persentase % Stasiun 1 Stasiun 2 Stasiun 3 Stasiun 4 Calothrix elsteri 4,37 7,55 0 4,46 Chaetophora 9,52 5,35 4,61 7,43 Chroococcales 2,78 13,84 2,96 5,2 Gyrodynium sp. 0 1,26 17,11 14,6 Oukopleura albicans 2,38 2,2 8,22 5,45 Raphidonema sp. 11,11 24,21 23,68 18,07
1,38–155,55 ind/L, kelimpahan jenis mikroalga  pada  stasiun  4  berkisar  antara 1,38–176,39  ind/L.  Jenis Raphidonema sp. merupakan jenis mikroalga yang kelimpahannya paling tinggi di setiap stasiun pengamatan.  Persentase  jenis Raphidonema sp.  tertinggi  terdapat  pada  stasiun  2  yaitu sebesar  24,21  %. Raphidonema sp.  tidak dapat  membentuk  karotenoid,  tidak  ada pigmentasi pada kloroplas. Spesies Raphidonema tertentu menghasilkan tokoferol sebagai antioksidan untuk melindungi  dirinya  sendiri.  Jenis  mikroalga ini perlu dieksplorasi dan diteliti  lebih  lanjut untuk pengembangan pemanfaatannya, khususnya  potensi  sebagai  bahan  baku biodiesel. Potensi 1 individu jenis Raphidonema sp. memiliki kandungan lemak sebesar  28-39  %  (Chu,  2017).  Penelitian Saito et al. (2006) telah melihat pertumbuhan Gyrodynium sp.  pada  hari  ke  13  sebanyak 6969  Ind/L,  dengan  menghasilkan  biomassa sebanyak  248,5  mgC  m -2 d -1 .  Komunitas
mikroalga Chroococcales tidak terlalu banyak  ditemukan,  namun  Biswas et  al. (2021) menemukan kurang dari 5 % dari total komunitas yang diteliti. Mikroalga Chroococcales memilki  potensi  kandungan lemak sebesar 25 mg/g. Mikroalga Raphidonema sp., Gyrodynium sp.  dan Chroococcales merupakan  tiga  spesies  yang kelimpahannya  terbesar  yang  ditemukan dalam penelitian ini, sehingga perlu dilakukan lebih lanjut untuk melihat kandungan  lemak  yang  berpotensi  sebagai bahan baku biodiesel.
Hasil  uji  regresi  linier  parameter kualitas perairan menunjukkan suhu berpengaruh cukup kuat terhadap kelimpahan mikroalga,  semakin  tinggi  suhu  maka semakin  tinggi  pula  kelimpahan  rata-rata mikroalga.  pH  juga  berpengaruh  cukup  kuat terhadap kelimpahan mikroalga tetapi memiliki  hubungan  yang  negatif,  semakin rendah  nilai  pH  semakin  tinggi  kelimpahan rata-rata  mikroalga.  Rendahnya  kelimpahan
mikroalga  pada  stasiun  1  diduga  adanya pengaruh  dari  parameter  perairan  dengan nilai  suhu  (Gambar  3a),  salinitas  (Gambar 3b),  DO  (Gambar  3d),  dan  kecerahan (Gambar  3e)  didapatkan  paling  rendah diantara semua stasiun sehingga mengganggu kehidupan  dari  mikroalga,  sedangkan  pada stasiun 2 dan 3 merupakan area wisata pantai sehingga  nilai  kelimpahannya  tidak  terlalu jauh berbeda.
Kelimpahan rata-rata
mikroalga  tertinggi  pada  stasiun  4  sebesar
561,11  ind/L,  stasiun  4  merupakan  area keramba jaring apung sehingga menghasilkan limbah budidaya. Tarigas et al. (2020) menyebutkan bahwa limbah budidaya seperti  sisa  pakan,  ekskresi  biota  dan  feses mengandung  unsur  nitrogen  (N)  dan  fosfor (P)  yang  merupakan  sumber  nutrisi  bagi kehidupan  mikroalga.  Tingginya  konsentrasi fosfat  berdampak  pada  tingginya  populasi mikroalga di perairan (Pello et al ., 2014).
(a) (b) (c) (d) (e)
Gambar 3.  Hubungan parameter kualitas perairan dengan rata-rata kelimpahan mikroalga, (a) Hubungan suhu terhadap kelimpahan mikroalga.  (b) Hubungan salinitas terhadap kelimpahan  mikroalga.  (c)  Hubungan  pH  terhadap  kelimpahan  mikroalga.  (d) Hubungan DO terhadap kelimpahan mikroalga. (e) Hubungan kecerahan terhadap kelimpahan mikroalga.
3.3. Indeks Keanekaragaman,
Keseragaman dan Dominansi Hasil  perhitungan  indeks  keanekara- gaman,  keseragaman  dan  dominansi  (Tabel 3)  pada  bulan  Oktober  didapatkan  indeks keanekaragaman  berkisar  antara  3,04–3,74, sedangkan  pada  bulan  November  didapatkan indeks keanekaragaman berkisar antara 2,39– 3,03.  Bulan  Oktober  menunjukkan  pada setiap stasiun memiliki keanekaragaman jenis mikroalga yang tinggi. Indeks keanekaragam- an  dapat  menggambarkan  jumlah  jenis  dan kelimpahan jenis mikroalga di suatu perairan. Nilai  indeks  keanekaragaman  lebih  dari  3 mengindikasikan  kondisi  perairan  tidak tercemar  atau  bersih  (Tarigas et  al., 2020). Hasil  perhitungan  indeks  keseragaman  bulan Oktober  didapatkan  berkisar  antara  0,53– 0,67,  sedangkan  pada  bulan  November indeks  keseragaman  didapatkan  berkisar antara  0,62–0,77.  Nilai  indeks  keseragaman tertinggi yaitu pada stasiun 1 dan nilai indeks keseragaman  terendah  yaitu  pada  stasiun  3 dan  4.  Hasil  perhitungan  indeks  dominansi bulan  Oktober  didapatkan  berkisar  antara 0,03–0,10, sedangkan bulan November indeks  dominansi  didapatkan  berkisar  antara
0,08–0,23.  Hal  ini  menunjukkan  pada  setiap stasiun  tidak  ada  jenis  mikroalga  yang mendominasi.  Nilai  indeks  keseragaman dapat  menggambarkan  sebaran  dan  jumlah individu  dalam  suatu  perairan.  Nilai  indeks dominansi  pada  semua  stasiun  termasuk  ke dalam  kriteria  rendah,  tidak  ada  jenis mikroalga  yang  mendominasi  suatu  perairan. Indeks  keanekaragaman  memiliki  hubungan yang  terbalik  dengan  indeks  dominansi, semakin  beranekaragam  jenis  mikroalga maka  tidak  ada  jenis  mikroalga  yang mendominasi.

## 3.4. Parameter Kualitas Perairan
Hasil  rata-rata  pengukuran  parameter kualitas  perairan  setiap  stasiun  (Tabel  4). Nilai  suhu rata-rata yang didapatkan berkisar antara 29,78–30,71 o C, dengan suhu tertinggi terdapat  pada  stasiun  4  dan  suhu  terendah terdapat  pada  stasiun  1.  Nilai  salinitas  rata- rata  yang  didapatkan  berkisar  antara  21,62– 31,12 psu, dengan salinitas tertinggi terdapat pada stasiun 3 dan salinitas terendah terdapat pada  stasiun  1.  Nilai  pH  rata-rata  yang didapatkan berkisar antara 6,68–8,12, dengan pH  tertinggi  terdapat  pada  stasiun  2  dan  pH
Tabel 3. Indeks keanekaragaman, indeks keseragaman dan indeks dominansi.
Indeks Stasiun 1 Stasiun 2 Stasiun 3 Stasiun 4 Okt Nov Okt Nov Okt Nov Okt Nov Keanekaragaman 3,74 3,03 3,14 2,91 3,04 2,65 3,23 2,39 Keseragaman 0,67 0,77 0,54 0,76 0,53 0,65 0,53 0,62 Dominansi 0,03 0,08 0,09 0,09 0,10 0,19 0,07 0,23
Tabel 4. Rata-rata nilai parameter kualitas perairan.
Titik pengamatan Rata-rata parameter kualitas perairan Suhu ( o C) Salinitas (psu) pH DO (%) Kecerahan (cm) Stasiun 1 29,78 ± 1,32 21,62 ± 5,47 7,66 ± 0,40 11,17 ± 2,21 33,75 ± 10,26 Stasiun 2 29,96 ± 0,65 30,12 ± 3,52 8,12 ± 0,57 18,63 ± 1,27 167,12 ± 92,25 Stasiun 3 30,52 ± 0,34 31,12 ± 4,15 7,41 ± 0,46 21,46 ± 3,25 173,75 ± 76,70 Stasiun 4 30,71 ± 0,72 27,87 ± 4,32 6,68 ± 0,86 11,86 ± 3,95 129,37 ± 77,80 Baku mutu 28 – 32 28 – 39 6,8 – 8,7 > 5 Alami (0 – 500)
Informasi: Nilai disajikan sebagai mean ± standar deviasi dan sumber baku mutu berasal dari Keputusan  Menteri  Negara  Lingkungan  Hidup  tentang  baku  mutu  air  laut  untuk  biota  laut tahun 2004.
Gambar 4.  Keterkaitan karakteristik lingkungan di setiap stasiun.
terendah  terdapat  pada  stasiun  4.  Nilai  suhu rata-rata  yang  didapatkan  berkisar  antara 29,78–30,71 o C,  dengan  suhu  tertinggi terdapat  pada  stasiun  4  dan  suhu  terendah terdapat  pada  stasiun  1.  Nilai  DO  rata-rata yang  didapatkan  berkisar  antara  11,17–21,46 %, dengan DO tertinggi terdapat pada stasiun 3  dan  DO  terendah  terdapat  pada  stasiun  1. Nilai  kecerahan  rata-rata  yang  didapatkan berkisar  antara  33,75–173,75  cm,  dengan kecerahan  tertinggi  terdapat  pada  stasiun  3 dan kecerahan terendah terdapat pada stasiun 1. Nilai  suhu,  salinitas,  pH  dan  DO  yang didapat  masih  dalam  kondisi  baik  untuk kehidupan mikroalga.
Nilai analisis PCA  yang didapat pada biplot  F1  dan  F2  sebesar  62,86  %  (Gambar 4). Hasil uji PCA menunjukkan nilai salinitas yang  rendah  pada  stasiun  1.  Nilai  salinitas pada  stasiun  1  yang  rendah  disebabkan adanya  masukan  air  tawar  dari  sungai. Rahmawati et al . (2021) menyebutkan bahwa tinggi rendahnya salinitas dikarenakan adanya  masukan  air  tawar  dan  input  sungai. Rendahnya pH pada stasiun 4 diduga perairan tersebut  mengandung  banyak  unsur  P.  Unsur P  memiliki  hubungan  dengan  nilai  pH, semakin tinggi unsur P maka semakin rendah nilai  pH.  Rendahnya  kecerahan  pada  stasiun
1  karena  kondisi  perairan  yang  keruh,  dan diduga  adanya  transport  sedimen  yang dibawa oleh sungai.

## IV. KESIMPULAN
Jenis  mikroalga  yang  ditemukan melimpah yaitu Calothrix elsteri, Chaetophora, Chroococcales, Grodynium sp. Oukopleura albicans, Raphidonema sp. jenis ini  perlu  diteliti  dan  dikembangkan  lebih lanjut  untuk  melihat  potensi  sabagai  bahan baku  biodiesel.  Selain  itu,  juga  ditemukan jenis  lain  yang  telah  dikembangkan  sebagai bahan  baku  biodiesel  yaitu Cholera sp., Spirulina sp., Nitzschia sp., dan Chaetoceros sp. Parameter  kualitas  perairan  masih  dalam kondisi baik untuk kehidupan mikroalga.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  mengucapkan  terima  kasih kepada  ADB (Asian  Devolopment  Bank) yang  telah  mendanai  penelitian  ini.  Penulis juga  mengucapkan  terima  kasih  kepada Laboratorium Kualitas Air Universitas Malikussaleh  yang  telah  memfasilitasi  dan berkontribusi  dalam  pelaksanaan  penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Abbaszaadeh,  A.,  B.  Ghobadian,  M.R. Omidkhah,  &  G.  Najafi.  2012.
Current biodiesel production technologies:  A  comparative  review. Energy Conversion and Management , 63: 138-148. https://doi.org/10.1016/j.enconman.20 12.02.027 American Public Health Association (APHA).  1989.  Standard  method  for the axaminatin df water and wastwater.  American  Public  Control Federation  19  th  Edition.  American Public Health Association Inc.
Washington DC. 541 p. Ari,  W.,  H.  Febriansyah,  &  S.  Suminto. 2019. Pengembangan standar biodiesel b20 mendukung implementasi diversifikasi energi nasional. Jurnal  Standardisasi , 21(1): 55-66. https://doi.org/10.31153/js.v21i1.736
Atadashi,  I.M.,  M.K.  Aroua,  &  A.A.  Aziz. 2011. Biodiesel separation and purification:
a
review. Renewable  Energy, 36:  437-
43.
https://doi.org/10.1016/j.renene.2010.
07.019
Bahagia.  &  V.  Viena.  2019.  Analisis komponen  yield  minyak  mikroalga hijau  dengan  medium  detmer. Jurnal Serambi  Engineering, 4:  457-463. https://doi.org/10.32672/jse.v4i1.979 Biswas,  T.,  S.  Bhushan,  S.K.  Prajapati,  &
S.R.  Chaudhuri.  2021.  An  eco- friendly strategy  for dairy wastewater remediation with high lipid microalgae-bacterial biomass production. Journal  of  Environmental Management, 286: 1-9. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.202 1.112196 Chu,  W.L.  2017.  Strategies  to  enhance production of microalgal biomass and lipids for biofuel feedstock. European
Journal  of  Phycology, 52(4):  419- 437. https://doi.org/10.1080/09670262.201
7.1379100
Gai,  C.,  Y.  Zhang,  W.T.  Chen,  P.  Zhang,  &
Y.  Dong.  2015.  An  investigation  of reaction  pathways  of  hydrothermal liquefaction using
Chlorella pyrenoidosa dan Spirulina  platensis . Energ.  Conver.  Manage. ,  96:  330-
339.
https://doi.org/10.1016/j.enconman.20 15.02.056
Gouveia,  L.  &  A.N.  Oliveira.  2009.
Microalgae  as  a  raw  material  for biofuels  production. J.  Ind  Microbiol Biotechnol., 36: 269-274. https://doi.org/10.1007/s10295-008-
0495-6
Gultom,  S.O.  2018.  Mikroalga:  Sumber energi terbarukan masa depan. Jurnal Kelautan, 11(1): 95-103. https://doi.org/10.21107/jk.v11i1.380
2
Halim,  R.,  M.K.  Danquah,  &  P.A.  Webley. 2011.  Oil  extraction  from  microalgae for  biodiesel  production. Bioresource
Technology, 102(1): 178-185.
https://doi.org/10.1016/j.biortech.201
0.06.136
Israwati, I.J., Effendy, & A.B. Patadjai. 2018.
Komposisi jenis dan kepadatan bentik diatom  pada  kolektor  dan  kaki  atau otot  abalon  ( Haloitis  asinina )  yang dipelihara  di  kawasan  sistem  IMTA ( Integrated Multi  Trophic Aqacuture ) out  door . Jurnal  Media  Akuatika, 3(1):
544-555. https://doi.org/10.33772/jma.v3i1.437
7
Kawaroe,  M.,  T.  Prartono,  A.  Sunuddin, D.W.  Sari,  &  D.  Agustine.  2010.
Mikroalga: Potensi
dan Pemanfaatannya  untuk  Produksi  Bio Bahan  Bakar. Institut  Pertanian Bogor Press. Bogor. 150 p.
Mercer, P. & R.E. Armenta. 2011.
Developments  in  oil  extraction  from
microalgae. European J. Lipid
Science and Technology , 113(5): 539- 547. http://doi.org/10.1002/ejlt.201000455 Musdalifah,  M.,  Y.  Rustam,  &  S.  Amini. 2015.  Kultivasi  dan  ektraksi  minyak dari  mikroalga Botryococcus  braunii dan Nannochloropsis sp. Bioma ,
11(1): 1-14. https://doi.org/10.21009/Bioma11(2). 1 Odum,  E.P.  1996. Dasar-dasar  ekologi .
Gadjah Mada University Press.
Yogyakarta. 697 p.
Pello,  F.S.,  E.M  Adwilaga,  N.V.  Huliselan, & A. Damar. 2014. Effect of seasonal on  nutrient  load  input  the  inner Ambon Bay. Bumi Lestari , 14(1): 63- 73. https://ojs.unud.ac.id/index.php/blje/a rticle/view/11254
Praharyawan, R. & S. Rachmayati. 2021. The effect  of  Aceh’s  natural  stone presence  on  the  growth,  produced biomass  and  primary  metabolites production  of Chlorella  vulgaris LIPI12-AL042.  IOP  Conf.  Series: Earth  and  Environmental  Science,
762:
1-7 . https://doi.org/10.1088/1755- 1315/762/1/012046
Purbani, D.C., W. Ambarwati, A.B. Kusuma,
&  N.E.  Herliany.  2019.  Identifikasi mikroalga laut dari Tambrauw, Papua Barat. Jurnal  Ilmu  dan  Teknologi Kelautan  Tropis ,  11(3):  777-790. https://doi.org/10.29244/jitkt.v11i3.25
862 Rahmawati, N.O., A. Hartoko, & N. Latifah. 2021. Analisis kelimpahan fitoplankton  di  perairan  Alang-alang Taman Nasional Karimunjawa.
Jurnal  Kelautan  Nasional, 6(2):  97-
108. http://ejournal- balitbang.kkp.go.id/index.php/jkn/arti cle/view/9008/pdf
Ravanipour,  M.,  A.  Hamidi,  &  A.H.  Mahvi.
2021. Microalgae biodiesel: A
systematic  review  in  Iran. Renewable and  Sustainable  Energy  Reviews, 150: 1-21. https://doi.org/10.1016/j.rser.2021.11 1426
Rozana,  E.,  M.I.  Sulaiman,  &  S.  Haryani. 2020. Pengaruh jenis mikroorganisme yang  diisolasi  dari  hutan  bakau  kota banda aceh terhadap perolehan biomassa  dan  minyak. Jurnal  Ilmiah Mahasiswa  Pertanian, 5(3):  7-14. https://doi.org/10.17969/jimfp.v5i3.1
5388
Sadvakasova,  A.K.,  N.R.  Akmukhanova,
B.K.  Zayadan,  A.A.  Usserbayeva, M.O. Bauenova, A.E. Akhmetkaliyeva, & S.I.
Allakhverdiev.  2019.  Search  for  new strains  of  microalgae-producers  of lipids  from  natural  sources  for biodiesel  production. International Journal  of  Hydrogen  Energy, 44(12):
5844-5833.
https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.201
9.01.093
Saito,  H.,  T.  Ota,  K.  Suzuki,  J.  Nishioka  &
A. Tsuda. 2006. Role of heterotrophic dinoflagellate  Gyrodinium  sp.  in  the fate of an iron induced diatom bloom. Geophysical  Research  Letters, 33(9): 1-4. https://doi.org/10.1029/2005gl025366 Tarigas, M.T., Apriansyah, & I. Safitri. 2020.
Struktur  komunitas  mikroalga  epifit berasosiasi  pada Sargassum sp.  di Perairan  Desa  Sepempang  Kabupaten Natuna. Jurnal  Laut  Khatulistiwa , 3(2): 61-68. http://doi.org/10.26418/lkuntan.v3i2.3 7932 Thapa,  S.,  N.  Indrawan,  &  P.R.  Bhoi.  2018.
An  overview  on  fuel  properties  and prospects of jatropha biodiesel as fuel for engines.
Environmental
Technology  &  Innovation ,  9:  210- 219.
https://doi.org/10.1016/j.eti.2017.12.0 03
Valdez,  P.J.,  M.C  Nelson,  H.Y  Wang,  X.N Lin, & P.E
Savage.
2012. Hydrothermal liquefaction of Nannochloropsis sp .: Systematic study  of  process  variables  dan analysis  of  the  product  fractions.
Biomass  &  Bioenergy, 46:  317-331. https://doi.org/10.1016/j.biombioe.20 12.08.009 Yakomovich,  K.M.,  N.P.G.  Gauthier,  C.B.
Engstrom,  &  T.  Leya.  2021.  A molecular  analysis  of  microalgae
from  around  the  globe  to  revise Raphidonema
(trebouxiophyceae, chlorophyta). Journal  of  Phycology, 57(5): 1-39. https://doi.org/10.1111/jpy.13183 Yamaji,  I.  1979.  Illustration  of  marine plankton of Japan. Vaikiska Publication. Japan. 593 p.
Submitted  :   31 December 2021 Reviewed  :   25 March 2022 Accepted  :  20 April 2022

## FIGURE AND TABLE TITLES
Figure 1.  Research location and microalgae sampling station (Source: Bing Maps satellite). Figure 2.  Total abundance of microalgae species at each station in two months.
Figure 3.  Relationship  of  water  quality  parameters  with  the  average  abundance  of microalgae, a. The relationship of temperature to the abundance of microalgae. b. Relationship  of  salinity  to  abundance  of  microalgae.  c.  Relationship  of  pH  to  the abundance  of  microalgae.  d.  The  relationship  of  DO  to  the  abundance  of microalgae. e. The relationship of brightness to the abundance of microalgae.
Figure 4.  The relationship between environmental characteristics at each station. Table 1.   Types of microalgae found in October.
Table 2.   Percentage of abundance of microalgae species at each station. Table 3.   Diversity index, uniformity index and dominance index. Table 4.   Average value of water quality parameters.