Abstrak —Kedelai  (Glycine  max)  merupakan  tanaman  yang membutuhkan  air  cukup  banyak  terutama  pada  stadium  awal pertumbuhan,  masa  berbunga  dan  pembentukan  serta  pengisian polong. Pada  umumnya kedelai di Indonesia ditanam  pada lahan yang  berpotensi  mengalami  keterbatasan  air  yang  dapat menyebabkan terhambatnya pertumbahan tanaman karena selain menghambat  proses  fotosintesis  juga  dapat  menghambat  proses penyerapan  hara  dari  dalam  tanah  oleh  akar  tanaman.  Oleh karena  itu  dibutuhkan  agen  biologi  untuk  dapat  membantu penyerapan  hara  yang  dibutuhkan  tanaman  dalam  kondisi tercekam dengan menggunakan mikoriza. Tujuan dari penelitian ini  adalah  dapat  mengetahui  pengaruh  pemberian  mikoriza vesikular  arbuskular  dengan  dosis  mikoriza  sebanyak  2  gram,  4 gram, 6 gram, 8 gram, 10 gram, dan juga kontrol pada tanaman kedelai  yang  tercekam  kekeringan  dengan  melakukan  pengujian pada  aktivitas  fotosintetik,  dan  produksi  osmoprotektan  pada tanaman  kedelai  di  tanah  dengan  kadar  air  rendah.Hasil  yang didapat yakni pemberian mikoriza memberikan dampak terhadap beberapa parameter yang diuji seperti pada tinggi tanaman, luas daun, jumlah daun dan juga kadar prolin yakni memiliki p value <0,05.
Kata  kunci —Cekaman  kekeringan,  Kedelai  (Glycine  max  L), Mikoriza.

## I. PENDAHULUAN
EKAMAN  kekeringan  pada  saat  pengisian  polong tanaman  kedelai  akan  berdampak  pada    produksi  yang rendah  karena  biji  yang  dihasilkan  lebih  kecil,  mempercepat gugurnya  daun,  dan  memperpendek  periode  pengisian  polong [1].  Cekaman  kekeringan  pada  fase  vegetatif  menyebabkan diameter batang mengecil, lebih pendek, stomata menutup  dan bobot kering berkurang. Cekaman kekeringan pada saat proses pembentukan  bunga  akan  mengurangi  jumlah  bunga  yang terbentuk sehingga jumlah polong akan berkurang secara nyata [2].  Cekaman  kekeringan  juga  menyebabkan  terhambatnya pertumbahan  tanaman,  karena  menghambat  fotosintesis  dan penyerapan hara dari dalam tanah. Cekaman kekeringan dapat terjadi pada kondisi <60% kapasitas lapang [2].
Cekaman kekeringan selama ini diatasi dengan pemanfaatan mikroba,  seperti  mikoriza.  Mikoriza  adalah  agen  hayati  yang bermanfaat  untuk  membantu  penyerapan  air  dan  juga  unsur hara. Selain itu, mikoriza biasa digunakan untuk meningkatkan
ketahanan  tanaman  terhadap  serangan  patogen  terutama patogen  tular  tanah.  Mikoriza  merupakan  bentuk  simbiosis mutualisme antara jamur dan akar tanaman tingkat tinggi yang menginfeksi akar inangnya [3].
Mikoriza  yang  telah  menginfeksi  akar  tanaman  inang  akan memproduksi  jalinan  hifa  secara  intensif  dan  memperpanjang hifa  tersebut  sehingga  tanaman  yang  mengandung  mikoriza mampu  meningkatkan  kapasitas  dalam  penyerapan  hara  baik unsur  hara  maro  maupun  mikro,  dan  juga  air  [1].  Fungi mikoriza  ini  pada  umumnya  dapat  ditemukan  pada  spesies tanaman tingkat tinggi yang tumbuh pada berbagai tipe habitat dan  iklim.  Adapun  penyebarannya  bervariasi  menurut  iklim, lingkungan  dan  tipe  penggunaan  lahan  [4].  Mikoriza indigenous berpotensi besar sebagai pupuk hayati (biofertilizer) karena salah satu sumber mikroorganisme tanah yang  sangat  membantu  di  dalam  siklus  unsur  hara,  yaitu dengan  memfasilitasi  penyerapan  hara  dalam  tanah  sehingga dapat  meningkatkan  pertumbuhan  tanaman.  Akan  tetapi adakalanya  asosiasi  mikoriza  tidak  selalu  menguntungkan tanaman  inangnya  tergantung  pada  faktor  lingkungan  seperti suhu, pH tanah, kelembapan tanah, kandungan fosfor, nitrogen dan kalium [4].
Berdasarkan kondisi tersebut, dapat dilakukan pengembangan  mengenai  peranan  mikoriza  dalam  membantu penyerapan  hara  pada  tanaman  yang  tercekam  kekeringan dengan  melakukan  penelitian  mengenai  peranan Vesicular Arbuscular  Mycorrhiza (VAM)  terhadap  aktivitas fotosintetik tanaman  kedelai  yang  tercekam  kekeringan,  baik  itu  pada respon  morfologis,  fisiologis  maupun  biokimia  tanaman kedelai.  Hasil  penelitian  ini  diharapkan  dapat  meningkatkan serapan hara dan juga air  tanaman yang tercekam kekeringan sehingga  dapat  membantu  pertumbuhan  tanaman  yang tercekam.

## II. METODOLOGI

## A. Waktu dan Tempat
Penelitian  ini  dilakukan  pada  bulan  Januari  2018  sampai dengan  Juni  2018  di green  house urban  farming  ITS, Laboratorium Biosains dan Teknologi Tumbuhan Departemen
Peran VAM ( Vesicular Arbuscular Mycorrhiza ) terhadap Aktivitas Fotosintetik dan Produksi Osmoprotektan pada Tanaman Kedelai ( Glycine Max L.) di Tanah Kering
L. Saidah, S. Nurhati, A. Muhibuddin
Faculty of Science, Sepuluh Nopember Institute of Technology, Faculty of Agriculture, Brawijaya University e-mail : nurhatika@bio.its.ac.id
C
Biologi  Fakultas  Ilmu  Alam  Institut  Teknologi  Sepuluh Nopember  Surabaya,  Laboratorium  Zoologi  dan  Rekayasa Hewan  Departemen  Biologi  Fakultas  Ilmu  Alam  Institut Teknologi  Sepuluh  Nopember  Surabaya  dan  Laboratorium Tanah  Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya, Malang.

## B. Alat dan Bahan
Alat  yang  digunakan  pada  penelitian  ini  adalah  Neraca analitik,  polybag,  nampan,  sekop  kecil,  ember,  benang, penggaris, spektrofotometer UV Vis, mortar dan pestel, kertas saring,  oven,  tabung  reaksi,  vortex,  mikroskop  stereo,  isolasi, gelas  objek,  pisau,  saringan  bertingkat  dengan  pori  600,  180, 75, 63 dan 38 μm, cawan petri, mikro pipet.
Bahan  yang  digunakan  pada  penelitian  ini  adalah  benih kedelai  varietas  dering1,  tanah,  formalin  5%  250  ml,  pupuk mikoriza dari Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya dengan kerapatann  spora  21  spora  per  gram,  kutex  bening,  kertas label,  kertas,  akuades  1.5  L,    alkohol  96%  10  ml,  larutan sulfosalisilat 3% 10 ml, ninhidrin 1,2 gr, asam asetat glasial 30 ml, asam fosfat 6 M 20 ml, 4 ml toluen, ethanol 0,05 mM 300 µl , ethanol 96% 2,7 ml, dan larutan glukosa.

## C. Cara Kerja

## 1) Analisis Sifat Fisik dan Kimia Tanah
Analisis  sifat  fisik  dan  kimia  tanah  dilakukan  di  Jurusan Tanah  Fakultas  Pertanian  Universitas  Brawijaya,  Malang. Sampel  tanah  yang  dianalisis  merupakan  sample  tanah  yang berasal  dari  tanah  taman.  Sample  tanah  tersebut  dianalisis sebanyak  3  kali  ulangan,  masing-masing  ulangan  sebanyak  ± 250  gram.  Sifat  Fisik  tanah  yang  diukur  adalah  tekstur  tanah, pH  tanah,  dan  suhu  tanah.  Sedangkan  sifat  kimia  tanah  yang diukur  adalah  bahan  organik  (C-organik),  kandungan  NPK, dan kadar air [5].
2) Persiapan Biji
Bahan  yang  digunakan  meliputi  akuades  dan  biji  kedelai varietas dering1 yang diperoleh dari Balai Penelitian Tanaman Kacang-kacangan  dan  Umbi-umbian  (BALITKABI),  Kendal Payak-Malang.
Langkah yang dilakukan adalah biji kedelai varietas dering1 direndam  selama  6  jam  menggunakan  akuades  kemudian ditiriskan.  Hal  ini  bertujuan  untuk  membantu  proses  imbibisi pada  biji  dimana  perendaman  tersebut  dapat  melembabkan kulit benih dan pori-porinya akan membesar dan air masuk ke bagian
3) Perlakuan Kering
Perlakuan  kering  yang  diberikan  pada  penelitian  ini  adalah dilakukan  penyiraman  lima  hari  sekali  dengan  kadar  air  50% dari kapasitas lapang.
Parameter aktifitas fotosintetik yang di amati : 1. Tinggi tanaman
Pengukuran tinggi tanaman dilakukan dengan menggunakan benang dan penggaris dari atas permukaan tanah hingga ujung daun tertinggi yaitu pada bagian dimana daun terakhir tumbuh. Pengukuran  tinggi  tanaman  dilakukan  setiap  2  minggu  sekali selama masa pertumbuhan [6].
2. Jumlah daun
Jumlah  daun  dihitung  pada  akhir  perlakuan  dengan menghitung  jumlah  keseluruhan  daun  pada  setiap  tanaman selain daun yang masih kuncup [6].
3. Luas daun Pengukuran luas daun tanaman dilakukan dengan cara daun tanaman  dipotong  dan  dipisah  dari  batangnya,  kemudian dilakukan  pengukuran  menggunakan  metode  replika  daun (blue print), yakni sebagai berikut : [7]
Keterangan : Berat Pola   : Kertas yang sudah dibuat pola Berat Kertas  : Berat kertas yang belum digambar Luas Kertas  : Kertas yang pertama kali digunakan
4. Kandungan Osmoprotektan Prolin
Analisis produksi osmoprotektan dilakukan dengan mengukur  kadar  akumulasi  prolin  pada  tanaman  kedelai. Prolin  dianalisis  dengan  cara  daun  segar    sebanyak  0,5  gr ditimbang  dengan  timbangan  analitik  dan  ditumbuk  dalam mortar  yang  diberi  larutan  sulfosalisilat  3%  b/v  yang sebelumnya  telah  didinginkan  dalam  lemari  pendingin. sebanyak 10 ml selanjutnya filtrat disentrifuse selama 5 menit. Supernatan disentrifuse kembali hingga warna menjadi bening. Filtrat ditera hingga 10 ml, dan sebanyak 2 ml dari filtrat yang diperoleh,  direaksikan  dengan  2  ml  ninhidrin  asam  (1.2  g ninhidrin dalam 30 ml asam asetat glasial dan 20 ml 6 M asam fosfat).  Ninhidrin  dalam  30  ml  asam  direaksikan  24  jam sebelum  analisis  dilakukan.  Filtrat kemudian dipanaskan pada suhu 100oC selama 1 jam, dan reaksi diakhiri dalam bak berisi air  es.  Campuran  reaksi  diekstraksi  dengan  4  ml  toluene, diaduk  dengan  vorteks  selama  15-20  detik.  Kromofor  yang mengandung  toluene  dikeluarkan  dari  fase  air,  dihangatkan pada  suhu  kamar  dan  absorban  diukur  pada  panjang gelombang  520  nm.  Toluene  digunakan  sebagai  blangko. Konsentrasi prolin ditentukan dengan kurva standar prolin [8].

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## A. Tinggi Tanaman
Gambar  1.  Diagram  rata-rata  pertumbuhan  tinggi  tanaman  kedelai  ( G.  max L.)
Hasil  tinggi  tanaman  memiliki p  value <0,05  yang menunjukkan  bahwa  pemberian  mikoriza  pada  tanaman kedelai  yang  diberikan  perlakuan  kekeringan  berpengaruh terhadap  pertumbuhan  tinggi  tanaman  kedelai.  Dapat  dilihat pada  gambar    1  dan  tabel  11  bahwa  tanaman  kedelai  pada konsentasi 8 gr dan 10 gr berbeda nyata dengan dosis mikoriza yang  lebih  rendah  dan  juga  kontrol,  baik  pada  kontrol  positif maupun  negatif,  berkaitan  dengan  perlakuan  pemberian mikoriza  yang  dapat  membantu  tanaman  dalam  cekaman kekeringan  yang  diberikan  baik  dalam  penyerapan  hara maupun  air.  Hal  tersebut  didukung  dengan  pernyataan  [9] bahwa  peningkatan  pertumbuhan  tanaman  kedelai  pada kondisi  cekaman  air  disebabkan  terjadinya  infeksi  akar  oleh mikoriza  terhadap  tanaman  kedelai,  sehingga  akar  yang terinfeksi  oleh  mikoriza ini mampu meningkatkan penyerapan unsur  hara  N  dan  air  di  dalam  tanah  unsur  hara  N  dapat membantu tanaman dalam pertumbuhan. Mikoriza tidak hanya membantu  tanaman  dalam  penyerapan  unsur  hara  dan  air, tetapi  juga  dapat  menghasilkan  hormon  dan  zat  pengatur tumbuh  seperti  auksin,  gibrelin  dan  sitokinin.    Auksin  dapat mempercepat  pembentukan  dan  perpanjangan  batang  serta daun,  berperan  dalam  perpanjangan  dan  pertumbuhan  awal akar,  meningkatkan  permeabilitas  sel  terhadap  air  dan pengembangan  dinding  sel  [9][10]Sedangkan  gibrelin  tidak hanya merangsang pemanjangan batang, tetapi juga pertumbuhan  tanaman  secara  keseluruhan,  termasuk  akar  dan daun [11].

## B. Luas Daun
Gambar 2. Diagram hasil luas daun pada tanaman kedelai ( G. max L.)
Hasil  uji  ANOVA  pada  luas  daun  memiliki p  value <0,05 Sehingga  menunjukkan  bahwa  dosis  mikoriza  yang  diberikan pada  tanaman  dalam  kondisi  kekeringan  berpengaruh  nyata terhadap  luas  daun  tanaman  kedelai.  Berdasarkan  gambar  .2 dapat  diketahui  bahwa  pada  perlakuan  mikoriza  dengan  dosis 8 gr dan 10 gr berbeda nyata dengan perlakuan kontrol positif dan  negatif  sehingga  dapat  ditarik  kesimpulan  bahwa  dengan penambahan  mikoriza  sebanyak  8  gr  dan  10  gr  dapat membantu  tanaman  kedelai  dalam  kondisi  kekeringan  yang ditunjukkan pada respon fisik berupa luas daun tanaman.
Tanaman akan merespon kekurangan air dengan mengurangi laju transpirasi untuk penghematan air. Kekurangan air pada daun akan menyebabkan sel-sel tanaman
kehilangan  turgor.  Mekanise  yang  dapat  memperlambat  laju transpirasi  salah  satunya  adalah  dengan  memperkecil  luas permukaan  daun  dari  ukuran  normalnya.  Memperkecil  luas permukaan  daun  juga  akan  memperkecil  tangkapan  radiasi surya  sehigga  berdampak  terhadap  penurunan  volume fotosintesis  [12]  [13]  [12]  juga  menyatakan  bahwa  respon tercepat  pada  pada  cekaman  kekeringan  ditandai  dengan keadaan fisik dari tumbuhan daripada perubahan kimianya.
Jika  dilihat  dari  hasil  (gambar  2)  diketahui  bahwa  tanaman kedelai tanpa mikoriza (kontrol) memiliki luas daun yang kecil sehingga  dapat  disimpulkan  bahwa  tanaman  tersebut  sedang merespon  kekurangan  air  yang  terjadi.  Berbeda  dengan tanaman kedelai yang diberi mikoriza 8 gr dan 10 gr memiliki luas  daun  yang  lebih  besar  dibandingkan  dengan  tanaman kedelai  pada  dosis  mikoriza  yang  lebih  rendah  maupun kontrol.  Hal  tersebut  membuktikan  bahwa  tanaman  kedelai dengan dosis mikoriza 10 gr dapat membantu dalam mengatasi cekaman kekeringan. Sebagaimana yang telah dinyatakan oleh [14] bahwa mikoriza dapat memperluas bidang serapan air dan hara  pada  tanaman.  Unsur  hara  dan  air  yang  diserap  tanaman akan  digunakan  dalam  proses  metabolisme  tanaman, khususnya meningkatkan proses fotosintesis sehingga fotosintat  yang  dihasilkan  sebagian  ditranslokasikan  untuk pertambahan luas daun. [11] mengemukakan bahwa perkembangan dan peningkatan ukuran daun dipengaruhi oleh ketersediaan  air  dan  unsur  hara.  Hal  ini  dikarenakan  air  dan unsur hara yang terlarut akan diangkut ke bagian atas tanaman dan sebagian lagi akan digunakan untuk meningkatkan tekanan turgor  sel  daun  [15][16]menyatakan  bahwa  unsur  hara  N merupakan  unsur  hara  yang  berperan  dalam  merangsang pertumbuhan  vegetatif  seperti  merangsang  pertumbuhan  daun pada tanaman.

## C. Jumlah Daun
Gambar 3. Diagram jumlah daun pada tanaman kedelai ( G. max L.)
Berdasarkan  hasil  uji  analisis  ANOVA,  rata-rata  jumlah daun memilki nilai signifikansi <0,05. Sehingga menunjukkan bahwa  dosis  mikoriza  yang  diberikan  pada  tanaman  dalam kondisi  kekeringan  berpengaruh  nyata  terhadap  jumlah  daun pada  tanaman  kedelai.  Dilihat  dari  gambar  3  tanaman  kedelai pada  dosis  6  gr,  8  gr,  10  gr  dan  juga  kontrol  positif  berbeda nyata  dan  juga  memiliki  jumlah  daun  yang  tinggi  yakni  6  gr (29,08), 8 gr (30,50), 10 gr (33,50) dan kontrol positif (34,25) jika  dibandingkan  dengan  perlakuan  dengan  pemberian mikoriza  2  gr,  4  gr  dan  juga  kontrol  negatif.  Hal  tersebut
disebabkan karena pada dosis mikoriza 2 gr, 4 gr dan kontrol negatif  tercekam  kekeringan  sehingga  tanaman  menggurkan daunnya untuk bisa mengurangi proses transpirasi yang terjadi. Menurut  [17]  semakin  besar  tekanan  cekaman  air  maka semakin  besar  pula  nilai  intensitas  kerusakan  daun  yang merusak  kloroplas  sehingga  daun  akan  cepat  mengalami klorosis.  Jumlah  daun  yang  sedikit  pada  saat  cekaman kekeringan juga disebabkan oleh adanya gangguan pertumbuhan  serta  mekanisme  adaptasi  tanaman  melalui pengguguran  daun  untuk  mengurangi  kehilangan  air  dalam jumlah yang besar.
Sedangkan pada tanaman dengan dosis mikoriza dosis 6 gr, 8 gr, dan 10 gr jumlah daun tidak mengalami penurunan yang disebabkan  adanya  simbiosis  dengan  mikoriza  sehingga tanaman dapat menyerap tetap menyerap unsur  hara meskipun dalam  kondisi  tercekam,  karena  mikoriza  yang  telah menginfeksi  akar  tanaman  tersebut  akan  memanjangkan hifanya untuk dapat menyerap unsur hara yang tersedia dalam tanah,  sedang  pada  tanaman  kontrol  positif  memiliki  jumlah daun  yang  tinggi  dikarenakan  pada  tanaman  kedelai  tersebut tidak  mengalami  kekeringan.  Hal  tersebut  didukung  dengan pernyataan [14] bahwa jumlah daun erat hubungannya dengan kemampuan  tanaman  dalam  memanfaatkan  unsur  hara  yang tersedia dalam melakukan proses fotosintesis guna mendapatkan  nutrisi  dan  sumber  makanan.  Tanaman memanfaatkan  unsur  hara  yang  ada  sebagai  pendukung  untuk melakukan  proses  fotosintesis  sebagai  sumber  karbon.  Dari pernyataan  [14]  tersebut,  dapat  ditarik  kesimpulan  bahwa tanaman  pada  dosis  mikoriza  6  gr,  8  gr,  10  gr  dan  kontrol positif  memiliki  unsur  hara  yang  cukup  atau  mampu memanfaat  kan  unsur  hara  yang  tersedia  jika  dibandingkan dengan  tanaman  kedelai  tanpa  mikoriza  (kontrol)  ataupun tanaman kedelai yang memiliki dosis mikoriza lebih rendah [5] menyatakan bahwa ketersediaan unsur hara N dapat membantu dalam pembentukan sel daun.
Selain unsur N, mikoriza juga membantu dalam penyerapan unsur  hara  K  atau  kalium  dimana  unsur  hara  tersebut    juga berpengaruh  terhadap  jumlah  daun  [18].  menyatakan  bahwa semakin  tinggi  unsur  K  maka  semakin  banyak  pula  jumlah daun yang dihasilkan, karena unsur K berperan penting dalam fotosintesis,  dan  secara  langsung  meningkatkan  pengambilan karbondioksida (CO2).

## D. Produksi Osmoprotektan
Pada  pengamatan  produksi  osmoprotektan  dilakukan  uji kadar  asam  amino  prolin  pada  tanaman  dikarenakan merupakan  indikator  cekaman  kekeringan    yang  banyak digunakan. [8]  menyebutkan bahwa pengingkatan kadar prolin meningkat  dibandingkan  asam  amino  lainnya.  Hasil  kadar prolin  yang  diperoleh  akan  di  dibandingkan  dengan  kurva standart  yang  telah  dibuat  menggunakan  prolin  murni sebelumnya. Berikut hasil yang di dapat :
Tabel  1. Prolin Murni No Konsentrasi Absorbansi 520 nm 1. 12 ppm 0,243 2. 14 ppm 0,287 3. 16 ppm 0,296 4. 18 ppm 0,328 5. 20 ppm 0,401
Berdasarkan  data  hasil  uji  menggunakan  prolin  murni diatas, maka dibuat kurva standar dengan sumbu x merupakan konsentrasi  prolin  per  ppm  dan  sumbu  y  merupakan  nilai absorbansi  ada  520  nm.  Sehingga  dapat  dibuat  grafik  sebagai berikut :

## Gambar 4. Grafik kurva standar prolin
Dari  persamaan  kurva  sandart  prolin  didapat  nilai  y  = 0,0357x + 0,2039 dan akan dihitung konsentrasi prolin (ppm) pada  daun  tanaman  kedelai  yang  telah  diberikan  perlakuan pemberian  mikoriza  dengan  berbagai  dosis  dan  juga  pada kontrol  yakni  tanpa  mikoriza.  Berikut  merupakan  hasil kandungan prolin yang didapat :
Tabel 2. Nilai kadar prolin pada tanaman kedelai (µmol/ prolin/gr)
No. Perlakuan sample Absorbansi 520 nm Prolin (ppm) Kadar prolin pada daun segar (µmol/ prolin/gr) 1 (+) 3,106 81,291 28,208 2 (-) 4,684 125,49 43,546 3 2 gr 4,121 109,72 38,074 4 4 gr 4,361 116,45 40,406 5 6 gr 1,07 24,26 8,418 6 8 gr 3,002 78,38 27,197 7 10 gr 2,656 68,69 23,833
Gambar 5. Diagram nilai absorbansi 520 nm, prolin (ppm), dan kadar prolin pada daun segar (µmol/ prolin/gr)
Hasil  uji  ANOVA one-way memiliki p  value <0,05 sehingga  menunjukkan  bahwa  perlakuan  pemberian  mikoriza secara  signifikan  berpengaruh  terhadap  kandungan  prolin tanaman  kedelai.  Dimana  dapat  dilihat  pada  gambar  5  bahwa tanaman  kedelai  pada  kontrol  negatif  memiliki  nilai  kadar prolin  pada  daun  yang  paling  tinggi  dari  yang  lain,  yakni 43,546. Hal tersebut adalah dampak dari perlakuan kekeringan yang  diberikan  yang  didukung  oleh  pernyataan  [19]  yang menyatakan  bahwa  tanaman  yang  tercekam  kekeringan  akan mengalami  peningkatan  kadar  prolin  dan  prolin  tersebut  akan melindungi  membaran  dan  protein  terhadap  tingginya konsentrasi  ion-ion  organik  da  juga  suhu  ekstrim  [20]  juga menyebutkan  bahwa  prolin  yang  disintesis  selama  periode kekurangan  air  dapat  berperan  sebagai  penyedia  nitrogen organik  yang  berguna  pada  proses  pemulihan  sel.  Sebaliknya pada perlakuan pemberian mikoriza 6 gr memiliki nilai prolin yang  paling  rendah  yakni  8,418  dimana  [19]  menyatakan bahwa  simbiosis  antara  akar  tanaman  tingkat  tinggi  dengan mikoriza  dapat  menyebabkan  tanaman  yang  berada  pada cekaman kekeringan akan beradaptasi terhadap kekurangan air tersebut  yang  disebabkan  akar  tanaman  bermikoriza  dapat melakukan penyebaran hifa secara luas untuk membantu dalam penyerapan  air    sehingga  tanaman  dapat  tumbuh  dengan normal.
Setelah  dilakukan  uji  lanjut  Duncan,  diketahui  bahwa  pada tanaman  dengan  dosis  mikoriza  6  gr  tidak  berbeda  nyata dengan  kontrol  positif.  Hal  tersebut  dapat  dikaitkan  dengan parameter  tinggi  tanaman  dan  juga  berat  kering  tanaman dimana  pada  dosis-dosis  tersebut  memiliki  nilai  yang  lebih tinggi dari pada tanaman dengan dosis mikoriza 6 gr (gambar 2 dan gambar 3). Hal tersebut juga dapat dikarenakan tanaman pada  dosis  mikoriza  memiliki  respon  terhadap  cekaman kekeringan  yang  berbeda-beda  yakni  pada  tanaman  dengan dosis  mikoriza  6  gr  merespon  adanya  cekaman  kekeringan pada  sintesis  biokimia  pada  tanaman,  akan  tetapi  mengalami penurunan  terhadap  respon  morfologis  yang  di  hasilkan, sedangkan sebaliknya yang terjadi pada tanaman dengan dosis 2  gr,  4  gr,  8  gr,  dan  10  gr  dimana  pada  kondisi  kekeringan tanaman  tersebut  tidak  mengalami  penurunan  pada  parameter morfologi  dan  juga  tingkat  produktifitas  yakni  biomassa
tanaman  yang  tetap  tidak  mengalami  penurunan,  tetapi  pada sintesis biokimia prolin mengalami kenaikan yang mengindikasikan  bahwa  tanaman  tersebut  tercekam.  Hal tersebut  didukung  dengan  pernyataan  Novenda  dan  Setyo (2016)  yang  menyatakan  bahwa  cekaman  kekeringan  yang terjadi  pada  tanaman  menyebabkan  beberapa  dampak diantaranya  yakni  penurunan  aktivitas  metabolisme  primer, dan aktivitas fotosintesis dimana dampak yang terjadi tersebut dipengaruhi oleh tanggapan masing-masing jenis tanaman.

## IV. KESIMPULAN
Kesimpulan pada penelitian ini adalah pada tinggi tanaman, luas  daun,  jumlah  daun  dan  juga  kadar  prolin  pada  tanaman kedelai  berpengarh  nyata  terhadap  perlakuan  yang  diberikan yakni memiliki p value <0,05.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]
W.  Muis,  A.,  Didik,  I.,  dan  Jaka,  “Pengaruh  Inokulasi  Mikoriza Arbuskula  terhadap  Pertumbuhan  dan  Hasil  Kedelai  (Glycine  Max (L.)  Merrill)  pada  Berbagai  Interval  Penyiraman,” Vegetalika ,  vol. 2, no. 2, 2013.
[2] W.  Suryanti,  S.,  Didik,  I.,  Putu,  S.,  and  Jaka,  “Kebutuhan  Air, Efisiensi  Penggunaan  Air  an  Ketahanan  Kekerigan  Kultivar Kedelai,” Agritech , vol. 35, no. 1, 2015.
[3] Y.  Setiadi,  “Pemanfaatan  Mikroorganisme  Dalam  Kehutanan,” 2001.
[4] E.  A.  Pang,  P.  C.,  and  Paul,  “Effect  Of  MVA  On  14C  And  15N Distribution  In  Nodulated  Fababeans,” J.  Soil ,  vol.  60,  pp.  241– 249, 1980.
[5] A. Nugroho, T.C., Oksana, dan Ervina, “Analisis Sifat Kimia Tanah Gambut  yang  Dikonversi  Menjadi  Perkebunan  Kelapa  Sawit  di Kabupaten Kampar,” J. Agroteknologi , vol. 4, no. 1, 2013.
[6] L.  Pauline,  D.K.,  Sunarti,  C.  dan  Ilmiati,  “Pemanfaatan  Mulsa Serbuk  Gergaji  Untuk  Mengatasi  Pengaruh  Cekaman  Kekeringan pada Bibit Tanaman Cabai (Capsicum annuum L.),” J. Din. , vol. 8, no. 1, pp. 30–40, 2017.
[7] dan  B.  G.  Sitompul,  S.M., Analisis  Pertumbuhan  Tanaman . Yogyakarta: UGM Press, 2017.
[8] D.  .  Khaerana,  Munif,  G.,  dan  Edi,  “Effect  of  Drought  Stress  and Harvesting  Time  on  Plant  Growth  and  Xanthorrhizol  Content  of Curcuma xanthorrhiza Roxb,” Bul.Agron , vol. 36, no. 3, 2008.
[9] A.  Buhaira,  Nerti,  S.,  Ardiyaningsih,  P.L.,  dan  Yudhi, “Pertumbuhan  dan  Hasil  Tanaman  Kedelai  dengan  Pemberian Mikokompos  dalam Kondisi  Cekaman Air,” J. Agroteknologi , vol. 2, no. 3, 2013.
[10] A.  S.  Parnata, Pupuk  Organik  Cair .  Jakarta:  PT.  Agromedia
Pustaka, 2004.
[11] B.  Lakitan, Dasar-Dasar  Fisiologi  Tumbuhan .  Jakarta:  PT.  Raja Grafindo Persada, 2004.
[12] D.  .  Moctava,  M.A.,  Koesrihati,  M.,  “Responses  of  Three  Mustard Varieties (Brassica rapa L.) Towards Water Stress Environment,” J. Produksi Tanam. , vol. 1, no. 2, 2013.
[13] J.  Sujinah,  dan  Ali,  “Mekanisme  Respon  Tanaman  Padi  terhadap Cekaman Kekeringan dan Varietas Toleran,” Iptek Tanam. Pangan , vol. 11, no. 1, 2016.
[14] D.  .  Lukitanigdyah,  “Tingkat  Persen  Infeksi  Propagul  Mikoriza Vesikular Arbuskular Indigenous Asal Desa Pangpong Kec. Labang Kab.  Bangkalan  Madura  pada  Perakaran  Tanaman  Padi  (Oryza Sativa),  Kedelai  (Glycine  Max  L.),  Dan  Tanaman  Gulma  Rumput Teki  (Cyperus  Rotundus),”  Institut  Teknologi  Sepuluh  Nopember, 2013.
[15] T.  Suharno,  I.,  Mawardi,  Setiabudi,  N.,  Lunga,  S.,  “Efisiensi penggunaan  nitrogen  pada  tipe  vegetasi  yang  bereda  di  stasiun penelitian  taman  nasional  gunung  halimun  Jawa  Barat,” Biodiversitas , vol. 8, pp. 287–294, 2007.
0 20 40 60 80 100 120 140 (+) (-) 2 gr 4 gr 6 gr 8 gr 10 gr Absorbansi 520 nm
Prolin (ppm) Kadar prolin daun
[16] dan  A.  Daryadi,  “Pengaruh  Pemberian  Kompos  Ampas  Tahu  Dan Pupuk NPK terhadap Pertumbuhan Bibit Kakao (Theobroma cacao
L.),” JOM FAPERTA , vol. 4, no. 2, 2017.
[17] R. dan M. A. Efendi, “Identifikasi Karakter Toleransi Cekaman Air Berdasarkan Respons Pertumbuhan dan Hasil Genotipe Jagung,” J. Balai Penelit. Tanam. Serealia , 2008.
[18] E. Roesmayanti, “Pengaruh Kosenterasi Pupuk Pelengkap dan asam
Giberelat  (GA3)  terhadap  Pertumbuhan  dan  Hasil  Terung  Jepang  ( Solanum  Melongena  L.  )  secara  Hidroponik,”  Universitas  Sebelas Maret, 2004.
[19] A.  .  Novenda,  I.K.,  dan  Setyo,  “Analisis  Kandungan  Prolin Tanaman  Kangkung  (Ipomoea  reptana  Poir),  BayaM  (Amaranthus spinosus),  dan  Ketimun  (Cucumis  sativus  L.),” Pancaran ,  vol.  5, no. 4, 2016.
[20] D. . Lawlor, “Limitation of Photosynthesis in Water Stress Leaves : Stomata  vs  Metabolism  and  The  Role  of  ATP,” Ann  Bot ,  vol.  89, pp. 871–885, 2002.