J.  Agrotek    Tropika.    ISSN  2337-4993 Vol. 8,  No. 2: 235 - 246,  Mei 2020
UJI KEMAMPUAN ISOLAT JAMUR Trichoderma spp. SEBAGAI ANTAGONIS Ganoderma boninense DAN Plant  Growth Promoting  Fungi (PGPF)

## ABILITY TEST OF  Trichoderma  spp. ISOLATE AS ANTAGONIST OF
Ganoderma  boninense AND  PLANT GROWTH  PROMOTING FUNGI  (PGPF)
Yohan Yogaswara*, Radix Suharjo, Suskandini Ratih dan Cipta Ginting
.
Jurusan Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Lampung, Jl. Prof. Soemantri Brodjonegoro, No. 1 Bandar Lampung 35145
*E-mail: yogaswarayohan@gmail.com

## ABSTRACT
This study aims to determine the ability of Trichoderma spp. Isolate that collection of Biotechnology Laboratory, Faculty of Agriculture, University of Lampung as an antagonist against  Ganoderma boninense and also its ability as a Plant Growth Promoting Fungi (PGPF). Testing of Trichoderma spp. as an antagonist include tests for growth, spore density, and viability. Testing of Trichoderma spp. as PGPF (Plant Growth Promoting Fungi) using cucumber plants F1 variety to obtain the ability of Trichoderma spp. in improving cucumber plant performance. The data obtained were analyzed by analysis of variance and further tested DMRT (Duncan’s Multiple Range Test) at 5% level. The results showed that all isolates of Trichoderma spp.  can act as an antagonist against  Ganoderma boninense. In the PGPF test, there were 3 isolates of Trichoderma spp. which showed the best performance as a plant growth promoting namely  L1, L5 and L10 isolates.  In addition, these isolates also have good antagonistic.
Keywords: antagonists,  Ganoderma boninense, Plant Growth Promoting Fungi,  Trichoderma spp

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kemampuan Trichoderma spp. Koleksi Laboratorium Bioteknologi Fakultas Pertanian Universitas Lampung sebagai antagonis terhadap jamur Ganoderma boninense dan juga kemampuannya sebagai Plant Growth Promoting Fungi (PGPF). Pengujian jamur Trichoderma spp. sebagai antagonis meliputi uji pertumbuhan, kerapatan spora, dan viabilitas. Pengujian jamur Trichoderma spp. sebagai PGPF ( Plant Growth Promoting Fungi ) menggunakan tanaman indikator timun varietas F1 untuk memperoleh hasil berupa parameter yang menunjukkan kemampuan jamur Trichoderma spp.  dalam meningkatkan performa tanaman. Data yang diperoleh dianalisis dengan sidik ragam dan diuji lanjut DMRT ( Duncan’s Multiple Range Test ) pada taraf 5%. Hasil penelitian menunjukkan semua isolat Trichoderma spp. yang dapat berperan sebagai antagonis terhadap jamur Ganoderma boninense . Pada uji PGPF, terdapat 3 isolat Trichoderma spp. yang menunjukkan performa paling baik sebagai pemacu pertumbuhan tanaman yaitu isolat L1, L5 dan L10. Selain itu isolat tersebut juga memiliki daya antagonis yang baik.
Kata Kunci : Trichoderma sp., Ganoderma boninense , antagonis, kerapatan spora, viabilitas, PGPF

## PENDAHULUAN
Salah satu kendala dalam budidaya kelapa sawit adalah penyakit busuk pangkal batang (BPB) yang disebabkan oleh jamur Ganoderma boninense.
Penyakit BPB berkembang sangat pesat terutama pada iklim dengan curah hujan tinggi seperti Indonesia sehingga menyebabkan kerugian yang cukup signifikan bagi produksi kelapa sawit.  Di beberapa perkebunan di Indonesia, penyakit ini menyebabkan kematian pada kelapa sawit hingga 80% atau lebih dari populasi kelapa sawit dan hal tersebut menyebabkan penurunan produk kelapa sawit per satuan luas (Susanto, 2011).
Saat ini pengendalian terhadap patogen pada tanaman masih bertumpu pada penggunaan pestisida sintetik,  termasuk  pengendalian  terhadap  jamur Ganoderma boninense .  Penggunaan pestisida sintetik ini secara terus-menerus telah banyak dilaporkan dapat membahayakan keselamatan hayati termasuk manusia dan keseimbangan ekosistem (Suwahyono, 2009). Pengendalian menggunakan fungisida sintetik akan meninggalkan residu  pada tanaman maupun lingkungan (Samways,1981).  Selain itu, penambahan fungisida juga dapat menyebabkan resistensi jamur patogen tanaman  terhadap  fungisida  yang  digunakan (Semangun, 2007).
Salah satu cara pengendalian terhadap jamur G.boninense adalah menggunakan agens hayati berupa jamur Trichoderma spp.  Berbagai  laporan menyebutkan bahwa jamur Trichoderma spp. mampu menghambat berbagai jenis patogen tanaman seperti Fusarium (Purnomo,  2006) ,  Rhizoctonia
(Andayaningsih, 2002) , Phytopthora (Istikorni, 2002) ,
dan juga G. boninense (Susanto, 2002).
Selain sebagai antagonis, jamur Trichoderma spp.juga  dilaporkan  berperan  sebagai  pemacu pertumbuhan tanaman atau biasa disebut sebagai Plant Growth  Promoting  Fungi (PGPF).    PGPF merupakan kelompok jamur pemacu pertumbuhan yang menghasilkan  hormon  pertumbuhan.    Selain  itu beberapa spesies PGPF dilaporkan mampu berperan sebagai  antibiotik  yang  berfungsi  menghambat pertumbuhan patogen disekitar tanaman (Shivana dkk ., 1996 ; Worosuryani, 2006).
Di  laboratorium  Bioteknologi  Pertanian Fakultas Pertanian Universitas Lampung terdapat isolat jamur Trichoderma spp. yang berasal dari Indonesian Culture  Collection  (InaCC),  biotrop  dan  koleksi Laboratorium Bioteknologi Pertanian FP Unila. Isolat- isolat tersebut belum diketahui kemampuannya dalam menghambat jamur G. boninense dan kemampuannya sebagai PGPF.  Untuk itu, perlu dilakukan pengujian terhadap kemampuan isolat jamur Trichoderma spp. tersebut sebagai antagonis G. boninense dan PGPF.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Februari – Juli 2016.  Pengujian kemampuan jamur Trichoderma spp.  sebagai  PGPF  dilaksanakan  di  rumah  kaca Fakultas  Pertanian  Universitas  Lampung.    Uji antagonisme  jamur Trichoderma spp.  terhadap Ganoderma spp.  dilakukan  di  Laboratorium Bioteknologi Pertanian, Fakultas Pertanian, Universitas Lampung.
Percobaan ini disusun menggunakan Rancangan
Acak Lengkap (RAL) dengan 12 perlakuan dan 4 ulangan.  Perlakuan dalam penelitian ini merupakan 12 isolat jamur Trichoderma spp. yang berasal dari koleksi Laboratorium  Bioteknologi  Pertanian  FP  Unila, Indonesian Culture Collection (InaCC) dan Biotrop. Pengujian meliputi uji pertumbuhan, kemampuan antagonisme kerapatan spora dan viabilitas spora dan uji antagonis yang dilakukan secara in vitro . Hasil seleksi dari beberapa isolat tersebut akan digunakan untuk pengujian selanjutnya yaitu uji PGPF di rumah kaca Fakultas Pertanian Universitas Lampung. Hasil pengamatan dianalisis ragam dan apabila terdapat perbedaan yang nyata akan dilanjutkan dengan uji DMRT ( Duncan’s MultipleRange Test ) pada taraf 5%.
Penyiapan Media. Media yang digunakan untuk pengujian secara in-vitro adalah PDA ( Potato Dextrose Agar ). Bahan-bahan yang digunakan adalah isolat  jamur Trichoderma spp.  dari:  koleksi laboratorium Bioteknologi Proteksi Tanaman Jurusan Agroteknologi  Fakultas  Pertanian  Unila;  isolat Trichoderma yang diisolasi dari asosiasi dengan tubuh buah Ganoderma  boninense (T.G);  isolat Trichoderma Indonesian culture collection (InaCC)
LIPI;isolat Trichoderma spp. Seameo Biotrop, isolat tubuh buah jamur Ganoderma boninense , kentang, agar, Dextrose, alkohol 70%, air steril, aquades, dan asam laktat.
Pengujian  Kemampuan Tumbuh  isolat
Trichoderma sp. Tahapan  ini  dilakukan  untuk mengetahui kecepatan tumbuh masing- masing isolat yang diuji.  Satu bor gabus biakan murni masing-masing
isolat jamur Trichoderma spp. yang berumur 4 hari diletakkan di tengah cawan petri yang berisi media PDA. Pengamatan dilakukan setiap hari terhadap diameter koloni jamur secara vertikal dan horisontal. Diameter koloni yang digunakan merupakan rerata hasil dua kali pengukuran diameter.
Pengujian Kerapatan Spora. Kemampuan isolat untuk memproduksi spora diamati dengan cara menambahkan 10 ml air steril pada cawan petri yang berisi biakan murni jamur Trichoderma spp. yang berumur 21 hari.  Spora jamur dipanen dengan cara mengeruk secara hati-hati permukaan koloni jamur dengan drigalski agar miselia dan media tidak terikut. Setelah  semua  spora Trichoderma spp.  terlepas, suspensi spora dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan dihomogenkan menggunakan rotamixer.  Setelah suspensi homogen, diambil sebanyak 1 ml selanjutnya diteteskan pada haemocytometer dan ditutup dengan kaca obyek hingga suspensi mengalir ke bawah kaca obyek dan mengisi ruang hitung.  Pengamatan dilakukan dengan menghitung jumlah spora dalam lima sampel kotak sedang dibawah mikroskop dan dihitung rata- ratanya (Gambar 1).
Kerapatan spora dihitung menggunakan rumus (Ramli, 2004):
Rata-rata jumlah spora x d x 10 6 Jumlah spora
80 x 0,25
Keterangan :
d = tingkat pengenceran 10 6 = konstanta
0,25 = konstanta
80 = jumlah kotak kecil/kotak yang diamati
Pengujian viabilitas spora. Uji viabilitas spora dilakukan dengan mengambil suspensi jamur Trichoderma spp. yaitu suspensi yang sama dengan yang digunakan untuk pengukuran kerapatan spora. Suspensi tersebut (masing-masing isolat) diteteskan menggunakan pipet tetes pada media PDA di 3 titik yang berbeda masing masing 1 tetes untuk tiap titik (Gambar 2).  Selanjutnya suspensi diamati dibawah mikroskop yang sebelumnya telah diinkubasi selama 12 jam.  Pengamatan dilakukan terhadap jumlah spora yang  berkecambah  dan  yang  tidak  berkecambah. Persentase daya kecambah jamur Trichoderma spp. dihitung menggunakan rumus (Tarman, 2006) :
Spora yang berkecambah P = ——————————— x 100 %
Spora seluruhnya
Pengujian Antagonis. Uji  antagonisme dilakukan pada media Potato Dextrose Agar (PDA) dalam cawan petri dengan menggunakan metode dual culture (Mahadtanapuk, dkk., 2007). Satu potongan bor gabus (diameter 0,8 cm) biakan murni jamur Ganoderma boninense diletakkan pada sebuah titik
dengan jarak 3 cm dari tepi cawan petri, sedangkan dari tepi yang lain dengan jarak yang sama diletakkan satu potongan bor gabus (diameter 0,8 cm) biakan murni Trichoderma spp.  (Gambar  3).    Inkubasi dilakukan di suhu ruang selama 3-4 hari (Prasetyo, dkk.,  2009).  Pengamatan  dilakukan  setiap  hari terhadap jari-jari koloni G. boninense yang berlawanan dan  jari-jari  koloni  yang  menuju  arah  jamur Trichoderma spp.
Pengamatan dilakukan setiap hari terhadap jari-jari koloni G. boninense yang berlawanan dan jari- jari koloni yang menuju arah jamur Trichoderma spp. Persentase penghambatannya diukur menggunakan rumus (Prasetyo dkk., 2009) :
Persentase daerah penghambatan =
Uji Kemampuan Trichoderma spp. sebagai PGPF. Media yang digunakan pada pengujian PGPF ini adalah campuran pasir dan pupuk kandang dengan perbandingan 1: 1. Media selanjutnya disterilisasi dengan menggunakan autoklaf hingga suhu 121°C pada
Gambar 1. Haemocytometer
Gambar 2. Titik penetesan suspensi Trichoderma spp.
pada media PDA
tekanan 1 atm selama 15 menit. Media yang sudah steril kemudian dipindahkan kedalam polybag ukuran 0,5 Kg. Masing masing polybag diisi media kurang lebih 500 gram dan diletakkan di rumah kaca Fakultas Pertanian Unila.
Penyiapan Tanaman Indikator . Tanaman indikator yang digunakan dalam uji PGPF adalah tanaman mentimun. Benih mentimun varietas Mercy
(F1) didisinfeksi dengan etanol 70% dan sodium hypochlorite 2%, kemudian disemai didalam cawan petri menggunakan lapisan kertas merang.
Penyiapan  Media  Beras  untuk Perbanyakan Isolat. Media yang digunakan untuk memperbanyak isolat adalah media beras. Beras yang akan digunakan sebagai media dicuci dan ditiriskan. Setelah  ditiriskan,  dikukus  selama  5  menit  dan
Gambar 3. Cara peletakan inokulum G. Boninense dan Trichoderma harzianum .
Keterangan : r1 = Jari-jari koloni Ganoderma boninense yang berlawanan arah dengan jamur Trichoderma spp.
r2 = Jari-jari koloni Ganoderma boninense yang menuju arah jamur Trichoderma spp.
Kode Isolat Asal Isolat Tahun Isolat N1 Nanas 2015 N3 Nanas 2015 N15 Nanas 2015 N24 Nanas 2015 L1 InaCC - L5 InaCC - L9 InaCC - L10 InaCC - S1 Seameo Biotrop - S2 Seameo Biotrop - S3 Tubuh buah Ganoderma 2016 S4 Tubuh buah Ganoderma 2016 Tabel 1. Isolat Trichoderma spp. yang digunakan dalam pengujian antagonis terhadap Ganoderma boninense
dimasukkan ke dalam 12 plastik tahan panas, kemudian di masukkan ke dalam autoklaf.  Masing-masing plastik berisi 100 gram beras.
Penyiapan Isolat Jamur Trichoderma spp.
Masing-masing isolat jamur yang akan diuji diremajakan pada media PDA selama 3 hari.  Setelah berumur 3 hari, satu potong bor gabus biakan murni dengan diameter ± 3 mm dipindahkan ke dalam kantong plastik yang berisi media beras (100g) steril dan diikat.  Kultur diinkubasi  selama  10  hari  pada  suhu  kamar (Worosuryani, 2006).
Aplikasi. Sebanyak 10 gram media beras yang telah  diinokulasikan  dengan Trichoderma spp. dicampur ke dalam media tanam yang telah dimasukkan ke dalam polybag .  Bibit mentimun yang berumur 2 hari kemudian dipindahtanamkan ke dalam yang telah diinokulasi dengan masing masing jamur Trichoderma sp. yang akan diuji.  Pengamatan dilakukan 2 hari sekali selama 21 hari terhadap tinggi tanaman, jumlah daun dan kehijauan daun (menggunakan chlorophyl meter ). Kenampakan akar, panjang akar, berat basah dan kering akar (root) serta berangkasan (shoot) diamati pada akhir pengamatan.
Gambar 4. Kenampakan diameter spora isolat N1 (1) dan isolat N3 (2)
Gambar 5. Kerapatan spora isolat L1 (1), isolat L5 (2) dan isolat S1 (3).
Pengumpulan  dan Analisis  Data. Data diameter koloni, produksi spora, viabilitas spora, tinggi tanaman, jumlah daun, kehijauan daun, panjang akar, berat basah dan kering akar dan brangkasan dianalisis ragam menggunakan ANOVA, dan apabila terdapat beda nyata antar perlakuan dilanjutkan dengan uji DMRT dengan taraf nyata 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Diameter  Koloni  Isolat  Jamur
Trichoderma spp. Semua  isolat  yang  diuji menunjukkan pertumbuhan yang hampir sama pada hari ke-4 setelah inokulasi.  Sebanyak 1 isolat (L1) memiliki diameter 8,8 cm, 2 isolat (L5 dan L10) mempunyai diameter koloni 8,4 cm, sebanyak 1 isolat (L9) memiliki diameter koloni 8,5 cm, sebanyak 8 isolat (N1, N3, N15, N24, S1, S2, S3 dan S4) memiliki diameter koloni 9 cm (Tabel 2).  Kenampakan diameter isolat  dapat dilihat pada Gambar 4.
Kerapatan  Spora. Dari  setiap  isolasi,
kerapatan spora tertinggi diperoleh sebesar 31,25 X 10 8 (L1).  Sebanyak 1 isolat (S3) memiliki produksi spora sebesar 19,0 x 10 8 /ml dan 1 isolat (N24) dengan produksi spora sebesar 18,5 x 10 8 /ml.  Selain itu juga terdapat isolat dengan produksi spora sebesar 13,0 x 10 8 /ml (L5).  Sebanyak 7 isolat (L9, L10, N1, N3, S1, S2, dan S4) memiliki produksi spora pada kisaran 3,0 – 12,0 x 10 8 /ml (Tabel 3). Kerapatan spora yang diperoleh pada umur 21 hari setelah inokulasi dapat dilihat pada Gambar 5.
Viabilitas  Spora. Viabilitas  spora  yang diproduksi oleh masing masing isolat berkisar antara 91,5 – 100%. Sebanyak 2 isolat N24 dan N3 berturut- turut memiliki viabilitas spora  91,5 % dan 3,7 %. Sedangkan sebanyak 7 isolat (L9, S2, S3,L5, S1, N15, dan L10) memiliki viabilitas antara 92,1 – 98% dan  sebanyak  3  isolat  (N1,L1  dan  S4)  memiliki viabilitas spora sebesar 100% (Tabel 4).  Gambar mikroskopis viabilitas spora dapat dilihat pada gambar 6.
Isolat Diameter (cm) N1 9 a N3 9 a N15 9 a N24 9 a L1 8,8 b L5 8,4 d L9 8,5 c L10 8,4 d S1 9 a S2 9 a S3 9 a S4
9 a
Tabel 2. Diameter pertumbuhan koloni Trichoderma spp. 4 hari setelah inokulasi

## Persentase  Penghambatan  Isolat
Trichoderma spp.terhadap Ganoderma boninense. Persentase penghambatan masing-masing isolat Trichoderma spp.  terhadap G.  boninense memberikan pengaruh yang berbeda nyata yaitu untuk 4 isolat (N3, L1, L5 dan L10) memiliki persentase penghambatan yang lebih tinggi dibandingkan 8 isolat (N1, N15, N24, L9, S1, S2, S3 dan S4) lainnya. Sedangkan  terdapat  1  isolat  dengan  persentase penghambatan terkecil dari semua isolat yaitu isolat S2 (Tabel  5).  Kenampakan  penghambatan  isolat
Gambar 6. Gambar viabilitas spora isolat Trichoderma spp. belum berkecambah (1) dan isolat Trichoderma spp. yang sudah berkecambah (2).
N1 9,00 def N3 6,75 efg N15 17,25 bc N24 18,50 b L1 31,25 a L5 13,00 cd L9 10,75 def L10 11,75 cde S1 3,00 fg S2 5,75 fg S3 19,00 b S4 12,00 cde Isolat Kerapatan spora (x10 8 )
Tabel 3. Kerapatan spora isolat Trichoderma spp. pada umur 21 hari setelah inokulasi
Trichoderma spp. terhadap Ganoderma boninense dapat dilihat pada Gambar 7.
Kemampuan  sebagai Plant  Growth Promoting  Fungi (PGPF). Kemampuan  isolat Trichoderma spp. sebagai PGPF ditentukan dari hasil pengukuran beberapa parameter. Parameter-parameter tersebut antara lain tinggi tanaman, panjang akar, berat basah tajuk dan akar, berat kering tajuk dan akar. Hasil pengamatan menunjukkan bahwa tidak semua isolat mampu memacu pertumbuhan tanaman. Hal tersebut terlihat dari hasil aplikasi beberapa isolat yang ternyata
N1 97,7 ab N3 97,8 ab N15 95,7 ab N24 91,5 b L1 100,0 a L5 94,4 ab L9 92,1 ab L10 98,0 ab S1 95,0 ab S2 93,3 ab S3 93,8 ab S4
100,0 a Isolat Viabilitas Spora (%)
Tabel 4. Viabilitas spora masing-masing isolat pada umur 21 hari setelah inokulasi
menghasilkan  tinggi  tanaman  yang  lebih  rendah dibandingkan dengan kontrol.
Tinggi  tanaman.  Hasil  pengukuran menunjukkan bahwa terdapat 8 isolat (N1, N3, N15, L9, S1, S2, S3 dan S4) memiliki hasil yang tidak berbeda nyata dengan kontrol dan sebanyak 4 isolat (N24,  L1,  L5  dan  L10)  menunjukkan  hasil  yang berbeda nyata yaitu lebih tinggi dari kontrol (Tabel 6).
Gambar  7.  Kenampakan  penghambatan  isolat Trichoderm a spp.  terhadap Ganoderma  boninense : 100% (1), 20,8% (2) dan 80,2% (3).
Panjang akar. Sebanyak 12 isolat (N1, N3, N15, N24,  L1, L5,  L9, L10,  S1, S2,  S3 dan  S4) menghasilkan panjang akar yang tidak berbeda nyata dengan kontrol, sedangkan untuk isolat S3 memiliki hasil yang berbeda nyata dengan isolat L5 dimana isolat L5 memiliki akar yang lebih panjang (Tabel 6).
Bobot basah tajuk dan akar. Untuk bobot basah tajuk, sebanyak 7 isolat (N1, N3, N15, S1, S2,
S3 dan S4) menghasilkan bobot yang tidak berbeda nyata dengan kontrol dan 5 isolat (N24, L1, L5, L9 dan L10 ) menghasilkan bobot yang berbeda nyata yaitu lebih tinggi dari kontrol.  Untuk parameter bobot basah  akar,  hanya  ada  2  isolat  (L1  dan  L10) menghasilkan bobot basah akar yang berbeda nyata dengan kontrol yaitu L10 lebih tinggi daripada kontrol dan L1 lebih rendah daripada kontrol (Tabel 6).
Bobot kering tajuk dan akar. Pada parameter bobot kering tajuk sebanyak 7 isolat (N15, L1, L5,
Kode Tinggi Tanaman (cm) Panjang Akar (cm) Bobot Basah Tajuk (g) Bobot Basah Akar (g) Bobot Kering Tajuk (g) Bobot Kering Akar (g) Hijau Daun (CCI) N1 37,8 d 16,8 ab 6,2 d 0,5 bc 1,2 cd 0,5 bc 13,8 a N3 50,8 cd 17,6 ab 7,8  d 0,6 b 1,4 cd 0,5 bc 15,1 a N15 52,5 bcd 18,6 ab 9,9 bcd 0,5 bc 2,3 ab 0,4 bcd 13,6 a N24 72,5 ab 19,0 ab 13,5 abc 0,4 bc 1,4  cd 0,3 cd 14,7 a L1 73,5 ab 17,9 ab 14,4 ab 0,2 c 2,5 ab 0,5 bc 14,7 a L5 83,3 a 23,0 a 17,1 a 0,6 b 2,3 ab 0,2 d 12,3 ab L9 64,5 abc 21,5 ab 13,9 ab 0,6 b 0,6 de 0,3 cd 13,7 a L10 79,3 a 18,5 ab 14,6 ab 0,9 a 2,7 a 0,6 ab 13 a S1 53,0 bcd 18,1 ab 10,0 bcd 0,5 bc 1,8 bc 0,4 cd 13,4 a S2 56,8 bcd 19,0 ab 10,5 bcd 0,5 bc 2,3 ab 0,3 cd 12,8 a S3 50,0 cd 15,3 b 8,2 cd 0,6 b 0,3 e 0,4 bcd 9,0 c S4 62,3 abc 19,5 ab 11,3 bcd 0,5 bc 2,8 a 0,8 a 9,7 bc K* 48,0 cd 17,6 ab 6,0  d 0,6 b 1,2 cd 0,3 cd 6,8 c
Tabel 6. Hasil pengukuran parameter untuk penentuan sebagai Plant Growth Promoting Fungi (PGPF)
L10, S2, S3 dan S4) menghasilkan bobot kering tajuk yang berbeda nyata dengan kontrol, dimana untuk isolat S3 memiliki bobot yang lebih rendah dibandingkan kontrol.  Pada parameter bobot kering akar, sebanyak 2 isolat (L10 dan S4) menghasilkan bobot kering akar yang berbeda nyata yaitu lebih tinggi dibandingkan kontrol (Tabel 6).
Isolat  Jamur Trichoderma spp.  yang berperan sebagai Antagonis dan PGPF Dalam penelitian ini, isolat Trichoderma spp.  dikatakan
Gambar 8. Kenampakan tinggi tanaman hasil uji PGPF.  Tanaman kontrol (1) dan tanaman yang diberi perlakuan L1 (2).
berperan sebagai antagonis apabila isolat tersebut memiliki persentase penghambatan >50%.  Isolat
Trichoderma spp. dikatakan berperan sebagai PGPF apabila isolat tersebut memberikan hasil yang lebih baik daripada  kontrol  untuk  semua  parameter  yang digunakan.  Hasil analisis menunjukkan bahwa terdapat 11 isolat yang berperan sebagai antagonis dan 3 isolat yang berperan sebagai PGPF (Tabel 7).

## KESIMPULAN
Dari 12 isolat jamur Trichoderma spp. koleksi Laboratorium Bioteknologi Pertanian FP Unila, semua isolat dapat  berperan sebagai antagonis  jamur G. boninense . Selain itu terdapat 3 isolat yang mampu berperan sebagai antagonis dan PGPF. Saran dari penelitian ini adalah perlu dilakukan aplikasi jamur Trichoderma spp.  di  bibit  kelapa  sawit  untuk menghambat pertumbuhan Ganoderma boninense.
Gambar 9. Kenampakan panjang akar tanaman hasil uji PGPF.  Tanaman yang diberi perlakuan L5 (1) dan tanaman yang diberi perlakuan S3 (2)

## DAFTAR PUSTAKA
Andayaningsih, P. 2002. Kemampuan Trichoderma sp. dalam Pengendalian Patogenitas Rhizoctonia solani pada Tanaman Kedelai. Jurnal Bionatura 4(1): 1–8.
Istikorni, Y. 2002. Pengendalian Penyakit Tumbuhan Secara  Hayati  yang  Ekologis  d a n Berkelanjutan. Makalah falsafah sains. Institut Pertanian Bogor.
Mahadtanapuk, S.M., Sanguansermsri, R.W., Cutler, V., Sardsud &Anuntalabhochai, S. 2007. Con- trol of Anthracnose Caused by Colletotrichum musae on Curcuma alismatifolia Gagnep. Us- ing Antagonistic Bacillus spp. Journal of Agri- cultural and Biological Sciences 2(2) : 54-61.
Prasetyo, J., Efri, & Suharjo, R. 2009. Seleksi dan uji Antagonisme Trichoderma spp. Isolat Tahan Fungisida  Nabati  terhadap  Pertumbuhan Phytophtora capsici. Jurnal HPT Tropika  9(1) : 58-66.
Purnomo, B. 2006. Seleksi Jamur Rizosfer Non- Patogenik untuk Pengendalian Penyakit Layu Fusarium pada Tanaman Jahe di Bengkulu. Jurnal Ilmu-Ilmu Pertanian Indonesia 8(1): 6-
11.
Ramli,  N.  2004.  Petunjuk Teknis  pada  Berbagai Kegiatan  Laboratorium  Lapangan.  Balai Pengembangan Proteksi Tanaman Perkebunan Sumatera Utara. Medan.
Samways, M. J. 1981. Biological Control of Pest and Weeds. Edward Arnold. London.
Semangun, H. 2007. Penyakit-Penyakit Tanaman
Hortikultura di Indonesia. Gajah Mada Uni- versity Press.Yogyakarta.
Shivana,  M. B., Meer, M. S., Kageyama, K., & Hyakumachi, M. 1994. Sterile Fungi from Zoysiagrass Rhizosphere as Plant Growth Pro- moters in Spring Wheat. Journal of Microbiol- ogy 40(8): 637 – 644.
Shivana, M. B., Meera, M.S. & Hyakumachi, M. 1996. Role of Root Colonization Ability of Plant Growth Promoting Fungi in the Suppression of take-All and Common Root Rot of Wheat.
Research Paper Crop Protection 15(6): 497- 504.
Susanto A.  2002.  Kajian  pengendalian  hayati
Ganoderma boninense Pat, penyebab penyakit busuk pangkal batang kelapa sawit. [Disertasi].
Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Susanto, A. 2011. Penyakit Busuk Pangkal Batang Ganoderma boinense pat. Informasi Organisme Pengganggu Tanaman. Pusat Penelitian Kelapa Sawit. Medan.
Suwahyono,  U.  2009.  Biopestisida.  PT.  Niaga Swadaya. Jakarta.
Tarman, P.E. 2006. Pengaruh Lama Masa Inkubasi Jamur Antagonis Trichoderma  harzianum terhadap Daya Hambat Perkembangan Jamur Patogen  Fusarium  oxysporum  Penyebab Penyakit Layu Tanaman Tomat. Jurnal Unbar 1(1): 1-8.
Worosuryani, C., Priyatmojo, A. & Wibowo, A. 2006. Uji Kemampuan Jamur yang diisolasi dari Lahan Pasir Sebagai PGPF (Plant Growth Pro- moting Fungi). Jurnal Agrosains 19(2): 179 – 192.