## AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DARI EKSTRAK RESIDU EMPELUR BATANG SAGU BARUK ( Arenga microcarpha )
Fitria Lolowang 1) , Edy Suryanto 2) , Gayatri Citraningtyas 3)
1) Program Studi Farmasi FMIPA Universitas Sam Ratulangi, 95115
2) Program Studi Kimia FMIPA Universitas Sam Ratulangi, 95115

## ABSTRACT
The purpose of the study was to determine the utilization of the extract of the polyphenol of stem sponge  barrel  and  determine  the  antioxidant  activity  of  the  stem  bark  of  the  sago  baruk.  Polyphenol extracts were used in TBA testing, total phenolic, flavonoid, tanin, and antioxidant activity testing using DPPH  method.  The  results  showed  that  antioxidant  compounds  could  be  used  to  help  inhibit  the occurrence of rancidity (decay) on a material. The extract of sponge stem barrel showed the antioxidant activity by testing with DPPH with highest activity value was 60 % at hotplate drying, while in extract by solar heating, it was in the second highest value that was 45,75 %.
Keywords : Sago Baruk (Arenga microcarpha), sun drying, hotplate drying, phenolic, Antioxidant, DPPH, TBA Test

## ABSTRAK
penelitian ini untuk menentukan pemanfaatan dari ekstrak polifenol empelur batang sagu baruk dan  menentukan  aktivitas  antioksidan  empelur  batang  sagu  baruk.  Ekstrak  polifenol  dimanfaatkan  pada pengujian TBA, pengujian kandungan total fenolik, flavonoid, tanin dan penentuan aktivitas antioksidan menggunakan  metode  DPPH.  Hasil  penelitian  menunjukan  senyawa  antioksidan  dapat  dimanfaatkan untuk  membantu  menghambat  terjadinya  ketengikan  (pembusukan)  pada  suatu  bahan.  Ekstrak  empelur batang  sagu  baruk  menunjukkan  adanya  aktivitas  antioksidan  melalui  pengujian  dengan  DPPH  dengan nilai  aktivitas  tertinggi  yaitu  60  %  pada  pengeringan  hotplate,  sedangkan  pada  ekstrak  dengan  cara pemanasan matahari, berada pada nilai tertinggi kedua yaitu 45,75 % .
Katakunci  : Sagu  Baruk  ( Arenga  microcarpa) ,  pengeringan  matahari,  pengeringan  hotplate, Fenolik, Antioksidan, DPPH, Uji TBA

## PENDAHULUAN
Senyawa fenolik terbukti melawan efek bahaya radikal bebas dan diketahui mampu menurunkan resiko kanker, penyakit jantung  koroner,  inflamasi  dan  penyakit neurodegeneratif  lain  dihubungkan  dengan stres  oksidatif  (Shahidi  dan  Naczk,  1995). Produk  derivat  tanaman  mengandung sejumlah  besar  fitokimia  dan  senyawa fenolik  (asam  fenolik,  flavonoid,  tanin, lignin) dan non fenolik (karotenoid, vitamin C) yang memiliki substansi antioksidan dan aktivitas antiradikal.
Menurut  Tahir  (2004),  mengemukakan bahwa  pada  ekstrak  empulur  sagu  dan  air hasil  rendaman  sagu  terdapat  kandungan fitokimia  seperti  fenolik,  flavonoid  dan tanin.  Menurut  Winarsi  (2007),  antioksidan dapat  menstabilkan  radikal  bebas  dengan melengkapi kekurangan  elektron yang dimiliki  radikal  bebas  dan  menghambat terjadinya  reaksi  berantai  dari  pembentukan radikal  bebas.  Antioksidan  merupakan  zat yang mampu memperlambat atau mencegah proses  oksidasi.  Antioksidan  didefinisikan sebagai  senyawa-senyawa  yang  melindungi sel  dari  efek  berbahaya  radikal  bebas oksigen reaktif.
Sagu  baruk  ( Arenga  microcarpha ) merupakan  tanaman  endemik  yang  banyak tumbuh  di  daerah  Kabupaten  Sitaro, Sangihe  dan  Talaud.  Sagu  baruk  juga termasuk  tanaman  perkebunan    karena masa  pertumbuhan  yang  panjang,  juga sebagai tanaman pangan karena menghasilkan  sagu  atau  karbohidrat  yang berasal dari empulur batang, serta dimanfaatkan  oleh  masyarakat  sebagai pangan  lokal  pengganti  beras.  Pengolahan sagu  ini  hanya  terbatas  pada  pembuatan
pangan  saja,  seperti  untuk  pengganti  nasi. Pada  umumnya  pengolahan  pati  sagu dilakukan  perendaman  yang  cukup  lama dan kemungkinan ada beberapa kandungan fitokimia dapat berfungsi sebagai antioksidan  dalam  pati  yang  ikut  terbuang bersamaan dengan air rendaman tersebut.
Berbagai penelitian yang telah dilakukkan  guna  untuk  meningkatkan kualitas, nilai jual, serta untuk pemanfaatan sagu  dalam  industri  pangan.  Berdasarkan penelitian,  Suryanto  dan  Papilaya  (2013) melaporkan bahwa jenis sagu ihur memiliki kandungan total fenolik dan flavonoid yang tertinggi.  Adapun  penelitian  lain,  Elisa (2015)  mengatakan  bahwa  tepung  sagu baruk  yang  diekstraksi  secara  sekuensial dengan akuades memiliki kandungan fitokimia  fenolik,  flavonoid  dan  tanin terkondensasi  serta  menunjukan  aktivitas penangkal  radikal  bebas  dan  kemampuan mereduksi  paling  tinggi  daripada  sagu baruk komersial.
Berdasarkan  penelitian-penelitian  yang telah  dilakukan  di  atas,  bahwa  penelitian mengenai sagu baruk memiliki potensi yang besar untuk menghasilkan kandungan fenolik  yang  masih  sedikit  terungkap. Sehingga itu, peneliti tertarik untuk meneliti tentang  pemanfaatan  ekstrak  polifenol  dan aktivitas  antioksidan  dari  empulur  batang sagu  baruk  dengan  metode  pengeringan yang sederhana.

## METODE
Bahan  baku  yang  digunakan  untuk tepung sagu  adalah tanaman sagu  yang siap panen  dengan  umur  panen  sekitar  9  tahun. Tanaman  sagu  diperoleh  dari  daerah  Kuma, Kabupaten Sanger.

## Proses Pengambilan Residu Sagu
Proses  pembuatan  tepung  sagu  yang mengandung  antioksidan  dilakukan  setelah batang dibelah memanjang sehingga bagian dalam terbuka. Bagian teras batang dicacah dan diambil kemudian empelurnya dipotong-potong
kecil dengan
menggunakan  pisau stainless  steel dengan potongan yaitu ukuran 1 cm. Sebanyak 400 g  empelur  sagu  baruk  diekstraksi  dengan aquades  200  mL  (dilakukan  dengan  cara dibagi  1:2,  sebanyak  2  kali  pengulangan) kemudian  dihaluskan  dengan blender selama  5  menit  dan  dilakukan  penyaringan menggunakan kain sifon untuk memperoleh residu  dan  ampas.  Selanjutnya  diendapkan agar dapat  tersaring dengan baik  kemudian filtrat  yang  didapat  dikeringkan  dengan cara pengeringan di atas hot plate selama ± 7 jam dan pengeringan dengan menggunakan  sinar  uv  (sinar  matahari) sampai ekstrak terlihat kering. Dengan cara yang sama dilakukan ekstraksi  pada ampas empulur  dengan  air,  ekstraksi  pertama  dan kedua  digabung  sehingga  mendapatkan hasil dari gabungan pengeringan.
Rendemen  tepung  dihitung  berdasarkan berat  kering  dan  hasilnya  disimpan  dalam kantong-kantong plastik sebelum dilakukan analisis  fitokimia  dan  pengujian  aktivitas antioksidan.
Penentuan  Kandungan  Total  Fenolik Sagu Baruk
Kandungan  dari  total  fenol  yang berada dalam filtrat volatile akan ditentukan dengan  metode  Jeong et  al .  (2005). Sebanyak 1 mL sampel ekstrak ditambahkan ke dalam tabung reaksi dengan penambahan reagen Folin-Ciocalteu (50%) dan kemudian campuran ini akan divortex selamat 3 menit.
Setelah  3  menit,  akan  ditambahkan  1  mL larutan  Na 2 CO 3 2%.  Selanjutnya  campuran disimpan  dalam  ruang  gelap  dengan  waktu penyimpan  sekitar  30  menit.  Absorbansi ekstrak dibaca menggunakan spektrofotometer  pada  λ  750  nm.  Hasilnya akan  dinyatakan  sebagai  ekuivalen  asama galat  dalam  mg/kg  ekstrak.  Kurva  kalibrasi dipersiapkan pada cara yang sama menggunakan asam galat sebagai standar. Penentuan  Penangkal  Radikal  Bebas DPPH (Burda dan Olezek, 2001)
Sebanyak  0,5  mL  masing-  masing ekstrak  kental  ditambahkan  dengan  2  mL larutan  1,1-difenil-2-pikrilhidrazil  (DPPH) 93  µm  dalam  etanol  dan  divortex  selama  2 menit.  Berubahnya  warna  larutan  dari  ungu menjadi  kuning  menunjukkan  efisiensi penangkal radikal bebas. Selanjutnya pada 5 menit  terakhir  menjelang  30  menit  inkubasi absorbansi  diukur  pada  panjang  gelombang 517  nm  dengan  menggunakan  spektrometer UV-Vis.  Aktivasi  penangkal  radikal  bebas dihitung  sebagai  persentase  berkurangnya warna DPPH dengan menggunakan persamaan: Aktivitas penangkal radikal bebas  (%)  = x 100%
Penentuan  Nilai  TBA  ( 2-thibarbituric acid )
Pengujian ketengikan, digunakan hewan  uji  tikus  dengan  mengambil  salah satu organnya. Organ yang dipakai yaitu hati dengan  berat  1  gr  kemudian  ditambahkan dengan  9  mL  larutan  buffer  phospat  pH  7 yang selanjutnya di vortex dan di sentrifuge dengan kecepatan 5000 rpm dalam waktu 10 menit.  Setelah  disentrifuge,  didapatkan
supernatan  atau  juga  disebut  homogenat yang  kemudian  di  ambil  0,5  mL  dan ditambahkan  kembali  buffer  phospat  pH  7 sebanyak  0,05  mL,  FeSO 4 0,03  mL,  0,2  % H 2 O 2 sebanyak  0,03  mL,  dan  0,05  mL  dari sampel  dengan  masing-masing  konsentrasi lalu  dilakukan  vortex  dan  selanjutnya inkubasi  dalam  keadaan  tanpa  cahaya selama  10  menit  kemudian  dilakukan  uji TBA.  Dari  hasil  supernatan  sebelumnya, diambil  0,5  ml  kemudian  ditambah  4  ml TCA 10 % lalu di vortex  dan di sentrifuge ± 1  menit.  Supernatan  yang  telah  selesai  di sentrifuge  kemudian  ditambah  2,5  ml  TBA 0,02  M  dan  dilakukan  vortex  terakhir  agar tercampur  merata  lalu  di  panaskan  dalam waterbath  yang  sebelumnya  telah  dipanasi dengan  suhu  100 0 C  selama  10  menit  dan setelah  itu  di  ukur  absorbansinya  pada panjang gelombang 532 nm dengan spektrofotometer.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Sagu baruk diekstraksi dengan menggunakan  aquades  dilakukan  dengan cara  yang  sederhana.  Empelur  sagu  baruk ditimbang  sebanyak  400  g  lalu  dipotong- potong  kecil  dengan  menggunakan  pisau stainless steel dengan potongan yaitu ukuran 1  cm.  Kemudian  sagu  diekstraksi  dengan aquades  200  mL  (dilakukan  dengan  cara dibagi 1:2, dengan 2 kali pengulangan), lalu dihaluskan dengan cara di blender selama 5 menit dan dilakukan penyaringan menggunakan  kain  sifon  untuk  memperoleh filtrat dan ampasnya. Setelah filtrat didapatkan
kemudian
diendapkan, selanjutnya  ekstrak  dikeringkan  dengan  2 cara  sederhana  yaitu  dengan  menggunakan hot  plate selama ± 7 jam dan menggunakan
sinar matahari. Kemudian dengan cara  yang sama dilakukan juga untuk ampas dari filtrat setelah diendapkan.
Rendemen  yang  diperoleh  dari hasil  ekstraksi  400  g  sagu  baruk  dengan pelarut  aquades  sebanyak  400  mL  dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel  1.  Rendemen  hasil  ekstrak kering sagu baruk
Kandungan Fitokimia Fenolik, Flavonoid, dan Tanin
Penentuan  kandungan  total  fenolik dilakukan untuk mengetahui potensi antioksidan  dalam  suatu  ekstrak  (Pratt  and Hudson,  1990).  Dalam  penelitian  ini, kandungan  total  fenolik  dapat  dilihat berdasarkan perbedaan dari cara pengeringan  kedua  ekstrak,  yaitu  dengan pengeringan  menggunakan hot  plate dan pengeringan menggunakan sinar matahari. Penentuan  kandungan  total  fenolik dilakukan untuk mengetahui potensi ekstrak empulur  sagu  baruk  sebagai  antioksidan. Pengujian  ini  menggunakan  metode  Folin- Ciocalteu  (Hung  dan  Yen,  2002)    untuk menentukan  secara  kuantitatif  senyawa fenolik yang terdapat dalam ekstrak tanaman.  Metode  Folin-Ciocalteu  telah
Massa (g) Rendem
en (%) Sam
pel
Basa h Ekst rak
Keri ng 200 200 16,709 20,606 8,35 10,20
digunakan  secara  luas  dalam  beberapa penelititan  karena  reagen  Folin-Ciocalteu dapat  mendeteksi  semua  senyawa  fenolik yang terdapat dalam ekstrak.
Tabel 2. Kandungan fitokimia

## ekstrak empulur batang sagu baruk
Pada  penentuan  kandungan  total  fenolik, ekstrak  yang  di  keringkan  dengan  hotplate memiliki  nilai  kandungan  75,1  mg/kg  dan ekstrak  yang  di  keringkan  dengan  matahari memiliki  nilai  kandungan  40,50  mg/kg, dengan  nilai  tersebut  dapat  dilihat  bahwa kandungan  fenolik  yang  terdapat  pada ekstrak  dengan  pengeringan  hotplate  lebih tinggi  dari  ekstrak  dengan  pengeringan matahari.  Luximon-Ramma et  al .  (2002), menyatakan  bahwa  perbedaan  kandungan fenol  antara  ekstrak  yang  berasal  dari sampel  segar  dan  kering  disebabkan  akibat proses pengeringan. Senyawa fenol memiliki  sifat  yang  mudah  teroksidasi  dan sensitif  terhadap  panas,  sehingga  dengan adanya proses pengeringan dengan menggunakan sinar matahari dapat menurunkan  kandungan  senyawa  fenol. Penentuan  dari  kandungan  total  fenol  ini sendiri menggunakan metode Folin-
Ciocalteu yang didasarkan pada kemampuan senyawa  fenolik  dalam  kedua  ekstrak empulur  batang  sagu  baruk  yang  bereaksi dengan asam fosmolibdat-fosfotungstat dalam reagen Folin-Ciocaltue dan menghasilkan senyawa molybdenum tungstat  yang  berwarna  biru.  Semakin  biru intensitas warna larutan dari ekstrak tersebut maka  menunjukan  semakin  besar  pula kandungan  total  fenol  dari  sampel  yang  di uji.
Pada  penentuan  kandungan  flavonoid, ekstrak  yang  di  keringkan  dengan  matahari memiliki nilai 2,215 mg/kg dan ekstrak yang di  keringkan  dengan  hotplate  memiliki  nilai 1,84  mg/kg.  Kandungan    total  flavonoid tertinggi  dapat  terlihat  jelas  yaitu  pada ekstrak  yang  di  keringkan  dengan  matahari. Hal ini ditunjukkan karena adanya pembentukan senyawa kompleks logam Al 3+ pada  gugus  hidroksi  (cincin  A)  dan  keton (cincin C)  yang bertangga dan orto-hidroksi (cincin  B)  yang  dapat  menghasilkan  warna kuning,  sehingga  dapat  disimpulkan  bahwa semakin  kuat  intensitas  warna  kuning  maka kandungan  flavonoid  yang  terkandungan dalam  ekstrak  semakin  tinggi  (Meda et  al ., 2005)
Flavonoid  merupakan  golongan  dari polifenol  dengan  struktur  dasar  fenol  yang senyawanya memiliki sifat mudah teroksidasi  dan  sensitif  terhadap  perlakuan panas  sehingga  dengan  adanya  tahapan pengeringan akan mempengaruhi kadar total flavonoid  yang terkandung di dalam ekstrak empelur  batang  sagu  baruk.  Kandungan senyawa  akan  menurun  seiring  dengan peningkatan dan tinggi suhu yang digunakan karena  terjadi  dekomposisi  fenol  yang berpengaruh  pada  kandungan  flavonoid.
Jenis Pengeri ngan Hotplat e Matahar i Kandungan Total (µg/mL)
Fen olik 75,1 40,5
0 Flavo noid 1,84 2,215 Ta nin
16, 7 13, 2
Selain itu, flavonoid memiliki sifat senyawa yang  tahan  panas  maupun  tidak  tahan terhadap panas ( thermolabile ).
Telah  di  teliti  bahwa  ada  penurunan  kadar flavonoid karena pengaruh variasi temperatur saat pengeringan dan juga karena adanya  proses  memasak  (Green,  2004). Dalam  penelitian  ini,  ekstrak  yang  di keringkan dengan matahari memiliki kandungan  flavonoid  yang  lebih  tinggi  dari ekstrak  yang  di  keringkan  dengan  hotplate karena pengeringan dengan hotplate memiliki  sirkulasi  udara  yang  kurang  baik dan  ini  merupakan  salah  satu  faktor  yang mempengaruhi  proses  pengeringan  dan sirkulasi ini mempengaruhi proses pengeringan  serta  metabolit  sekunder  dari ekstrak  yang  didapatkan.  Dan  juga  pada penelitian  ini  menunjukan  penurunan  total flavonoid  karena  adanya  proses  pemanasan yang  terjadi  selama  dilakukan  proses pengeringan  hotplate,  sehingga  flavonoid mengalami  proses  oksidasi.  Sifat  metabolit sekunder berbeda-beda terutama pada bagian  tanaman  yang  digunakan,  apabila senyawa  yang  terkandung  tidak  tahan terhadap proses pemanasan maka mekanisme  oksidasi  yang  terjadi  akan mengakibatkan  degradasi  pada  senyawa yang terkandung.
Sedangkan untuk penentuan
kandungan tanin dinyatakan sebagai miligram katekin per kilogram, ekstrak yang di keringkan dengan matahari memiliki nilai yang  lebih  tinggi  yaitu  16,7  mg/kg sedangkan ekstrak yang di keringkan dengan hotplate memiliki nilai kandungan yaitu 13,2 mg/kg.  Dari  data  kandungan  total  tannin agak sedikit berbeda dengan data kandungan total fenolik dan kandungan total  flavonoid,
dimana  pada  kedua  kandungan  tersebut ekstrak dengan pengeringan matahari memiliki nilai kandungan lebih tinggi.
Aktivitas penangkal radikal bebas dengan DPPH
Aktivitas antioksidan dari ekstrak empulur  batang  sagu  baruk  dilakukan dengan  metode  penangkal  radikal  bebas DPPH.  Prinsip  dari  metode  penangkapan radikal  adalah  pengukuran  penangkapan radikal  bebas  sintetik  dalam  pelarut  organik polar  seperti  etanol  pada  suhu  kamar  oleh suatu  senyawa  yang  mempunyai  aktivitas antioksidan.  Proses  penangkapan  radikal bebas  ini  melalui  mekanisme  pengambilan atom  hidrogen  dari  senyawa  antioksidan oleh  radikal  bebasa  sehingga  radikal  bebas menangkap  satu  elektron  dari  antioksidan. Radikal  bebas  sintetik  yang  digunakan DPPH.  Senyawa  DPPH  bereaksi  dengan senyawa  antioksidan  melalui  pengambilan atom  hirdrogen  dari  senyawa  antioksidan untuk  mendapatkan  pasangan  elektron (Pokorny et al ., 2001).
Senyawa yang bereaksi sebagai penangkal  radikal  bebas  akan  mereduksi DPPH  yang  dapat  diamati  dengan  adanya perubahan  warna  DPPH  dari  ungu  menjadi kuning  ketika  elektron  ganjil  dari  radikal bebas  yang  akan  menbentuk  DPPH-H tereduksi (Molynuex, 2004).
Konsentrasi
Gambar  3.  Aktivitas  Penangkal  Radikal Bebas DPPH
Berdasarkan hasil yang didapat, aktivitas  antioksidan  tertinggi  terdapat dalam  ekstrak  yang  dipanaskan  dengan hotplate dengan konsentrasi 4000 ppm.
Aktivitas  penangkap  radikal  bebas  tertinggi terdapat  pada  ekstrak  yang  dipanaskan dengan hotplate pada konsentrasi 4000 ppm sebesar  66,1  %  diikuti  ekstrak  dengan konsentrasi 5000 ppm, 3000 ppm, 2000 ppm dan 1000 ppm yaitu sebesar 65,9; 64,6; 53,5; dan  39,6  %.  Sedangkan  pada  ekstrak  yang dipanaskan matahari aktivitas yang tertinggi terdapat pada konsentrasi 3000 ppm sebesar 49,5  %  diikuti  ekstrak  dengan  konsentrasi 1000  ppm,  5000  ppm,  4000  ppm  dan  2000 ppm yaitu sebesar 48,3; 45,3; 44,7; dan 44,3 %.
Menurut Lai  et  al .  (2001),  aktivitas penangkalan radikal bebas DPPH umumnya naik  dengan  penambahan  ekstrak  sampai dengan  konsentrasi  tertentu,  kemudian aktivitas  akan  turun  dengan  penambahan konsentrasi yang lebih besar. Hal ini sejalan dengan  hasil  yang  di  dapat,  dengan  adanya penambahan  konsentrasi  yang  lebih  tinggi
maka semakin turun aktivitas dari penangkal radikal bebas.
Nilai TBA (2- thiobarbituric acid )
TBA  mengukur  warna  merah  muda yang  dihasilkan  oleh  pereaksi  TBA  dengan malonaldehid.  Warna  merah  muda  ini diketahui  merupakan  bentuk  kondensasi produk antara dua molekul TBA dengan satu molekul  malinic  dialdehid.  Malonaldehid merupakan  produk  oksidasi  yang  berasal dari  aldehid  tidak  jenuh  yang  merupakan hasil pemecahan hidroperoksida.
Dalam pengujian TBA ini, di dapatkan hasil uji yang akan disajikan pada gambar 4.
Gambar  4.  Persentase  Hasil  Uji  TBA  dari sampel  ekstrak  empelur  batang  sagu  baruk (Konsentrasi  1000  ppm,  2000  ppm,  3000 ppm, 4000 ppm, dan 5000 ppm)
Dari  hasil  pengukuran  absorbansi tersebut,  sampel  ekstrak  dengan  cara pemanasan hotplate memiliki nilai absorbansi paling tinggi seperti yang terlihat pada  gambar  4.  Persentase  dari  uji  TBA memperlihatkan  bahwa  ekstrak  dengan  cara pemanasan  hotplate  pada  konsentrasi  1000 ppm memiliki daya hambat lebih tinggi dari
39,6 53,5 64,6 66,1 65,9 48,3 44,3 49,5 44,7 45,3 0 10 20 30 40 50 60 70 1000 2000 3000 4000 5000 Hotplate Matahari 0 10 20 30 40 50 60 70 0 2000 4000 6000 Uji TB A ( % ) Konsentrasi (ppm) Hotplate Matahari
yang lainnya dengan nilai 60 %. Sedangkan pada  ekstrak  dengan  cara  pemanasan matahari,  berada  pada  nilai  tertinggi  kedua yaitu  45,75  %  walaupun  pada  ekstrak  ini nilai  persentasenya  yang  tertinggi  terdapat pada  konsentrasi  5000  ppm.  Adanya perlakuan  yang  tidak  dikendalikan  dengan baik selama percobaan pada metode ini juga ikut mempengaruhi kecil besarnya hasil dari metode TBA. Metode ini memiliki kelemahan,  yaitu  TBA  tidak  stabil  dan terurai dalam kondisi  yang panas dan tinggi asam,  terutama  bila  ada  peroksida.  Produk uraian  ini  dapat  menyerap  pada  gelombang yang sama dengan TBA (Ketaren 1986).
Pada  pengujian  fenolik,  flavonoid, tanin,  DPPH  dan  TBA  ini  memperlihatkan bahwa meskipun kedua metode pengeringan ekstrak  di  keringkan  dengan  panas,  namun perbedaan cara pengeringan dapat mempengaruhi  jumlah  kandungan  senyawa yang  terdapat  dalam  ekstrak.  Dalam  cara pengeringan  menggunakan  panas,  peristiwa terjadinya oksidasi pada senyawa mengakibatkan nilai kandungan pada masing-masing  pengujian  diatas  kurang memuaskan.

## KESIMPULAN
Ekstrak  residu  empelur  batang  sagu baruk  menunjukkan  adanya  aktivitas antioksidan  melalui  pengujian  DPPH dengan  nilai  aktivitas  yaitu  60  %  pada pengeringan hotplate dan 45,75 %  pada cara pemanasan matahari.
DAFTAR PUSTAKA
Atsumi,  S.;  Hanai,  T.;  Liao,  J.  C.  2008. "Non-fermentative  pathways Nature 451 (7174): 86–9
Burda  S.  and  Oleszek  W.  (2001), Antioxidant for synthesis of branched- chain  higher  alcohols  as  biofuels ". and anti- radical activities of flavonoids . Food Chemistry
Day,  R.  A.  Amd  A.  L.  Underwood.  2002. Analisis  Kimia  Kuantitatif .  Edisi Keenam.  Jakarta.  Penerbit  Erlangga. Hal 394,396-404.
Gali-Muhtasib,  H.U.,  S.Z.  Yamout,  and M.M.  Sidani.  1999. Plants  Tanin  as Inhibitors of Hydroperoxide
Production  and  Tumor  Promotion Induced by Ultraviolet B Radiation in Mouse  Skin  in  vivo. Oncol  Rep . 6 : 547-553.
Harbone,  J.  B.  1987. Metode  Fitokimia . Jillid II.  Penerbit ITB : Bandung
Hayati,  E.  Kamilah,  A.G.  Fasyah  dan  L. Sa’adah.  2010. Fraksinasi dan Identifikasi  Senyawa  Tanin  pada Daun  Belimbing  Wuluh  (Averrhoa bilimbi L. ). J. Kimia . 4 : 193-200.
Hung,  C-Y.  Dan  G-C.  Yen.  2002. Antioxidant  Activity  of  Phenolics Compounds  Isolated  from  Mesona procumbens  Hemsl .  J.  Agric.  Food Chem. 50: 2993-2997
Jadhv,  S.J.,  Nimbalkar,  S.S.,  Kulkarni, A.D.  &  Madhavi,  D.L.  1996. Lipid Oxidation  in  Biological  and  Food Systems .  Dalam  D.L.  Madhavi,  S.S.
Deshpandeand  D.K.  Salunkhe  (eds.) Food  Antioxidants  Technological, Toxicological, and Health,
Drespectives.  Marcel  Dekker,  Inc, New York.
Jeong,  S.M.,  Kim,  S.Y.,  Kim,  D.R.,  Jo, S.C.,  Nam,  K.C.,  Ahn,  D.U.  &  Lee, S.C.  2005. Effect  of  Heat  Treatment on the Antioxidant Activity of Extracts from  Citrus  Peels . J.  Agric.  Food Chem . 33 : 213-217
Kaur, C. D dan S. Saraf. 2009. In Vitro Sun Protection  Faktor  Determination  of Herbal  Oils  Used  in  Cosmetics . Pharmacognosy Research . 2 :22-23.
Lay,  A.,  dan  Indrawanto,  C.  2013. Status dan  Potensi  Sagu  Baruk  Untuk Pangan  dan  Konversi  Lahan . Pers . 12 : 65-77.
Lay,  A.  2002. Alat  pengolahan  sagu mekanisme system terpadu. Paten No.
ID  0  0000  367  S.  DirektoratJendral Paten Merek dan Hak Cipta Kementrian Hukum dan HAM. Jakarta.
Lai,  L-S.Chou, S-T dan Chao, W-W. 2001. Studies on the antioxidative Actibities of  Hsian-tsao  (Mesona  Procumbens Hemsl)  Leaf  Gum . J . Agric . Food Chem . 49: 963-968
Lohenapessy,  J.  E.,  Luhukay,  M.,  Talakua, S., Salampessy, H. dan  Riry, J. 2010. Sagu  Harapan  dan  Tantangan .  Bumi Aksara. Jakarta.
Luximon-Ramma,  A.,  T.  Bahorun,  M.A.
Soobrate, O.I. Aruoma.
2002.
Antioxidant  Activities  of  Phenolics, Proanthocyanidin,  and  Flavonoid
Components  in  Extract  of  Cassia
fistula .  J:Agric.  Food  Chem.  50:
5042-5047.
Marianus.  2011. Tanaman  sagu  baruk (Arenga microcarpha) sebagai sumber  pangan  lokal  di  Kabupaten Kepulauan Sangihe . Laporan
Penelitian .  Pascasarjana  Universitas Brawijaya. Malang.
Mitfahoracman. 2005. Sagu Baruk (Arenga microcarpha  Becc),  sebagai  sumber karbohidrat  dan  tanaman  reboisasi dari  Kabupaten  Kepulaun  Sangihe . Buletin Palma . 64-72.
Molyneux,  P.  2004. The  use  of  the  Stable Free  Radical  Diphenylpicrylhydrazyl (DPPH)  for  Estimating  Antioxidant . J. of Sci. Tech . 26 : 211-557.
Oki, P.  L. 2012. Pengolahan  Sagu di  Desa Kuma, Tabukan Tengah . Blogspot.com.  Diakses  Pada  9  Juli 2015.
Panovska,  T.K.,  S.  Kulevanova.,  Stefova. 2005. In  Vitro  Antioxidant  Activity  of
Some  Teucrium  Spesies  (Lamiaceae).
Acta Pharm . 55 :207-214. Papilaya, E. C. 2009 . Sagu untuk Pendidikan  Anak    Negeri .  IPB-Press.
Bogor.
Polnaya,  F.  J.,  J.  Talahuta,  Haryad  dan D.W.  Marseno.  2009. Karakteristik Tiga Jenis Pati Sagu (Metroxylon sp) . Hidroksipropil. J . Agritech . 29 :58-65.
Pontoh,  J.  2004. Sifat-sifat  pati  aren  dan pemanfaatannya dalam produk pangan  dan  industry. Proseding . Seminar Nasional Kimia Aren. Manado.
Rohman, A. 2007. Kimia Farmasi Analisis . Cetakan  I.  Yogyakarta.  Penerbit Pustka Pelajar. Hal 255.
Pokorny  J,  and  Korczak,  J.  2001. Preparation  of  natural  antioxidant . In:  M.  Gordon  (Ed),  Antioxidant  In Food.  CRC  Press.  New  York, Washington D.C. 311-330
Pratt,  D.E.,  dan  B.J.F.  Hudson.  1990.
Natural  Antioxidant  Not  Exploited Commercially Elsevier Applied Science . London. Shahidi,  F.,  dan  M.  Naczk.  1995 .  Food
Phenolics, Sources,
Chemistry,
Effects  Aplications .  Technomic  Publ. Co. Inc. Basel Switzerland
Suryanto,  E.,2012. Fitokimia  Antioksidan . Surabaya : Putra Media Nusantara.
Svobodova,  A.,  J.  Psotova.,  D.  Walterova.
2003. Natural  Phenolics  in  the Prevention of UV-Induced Skin
Damage . Biomed. Pap. 147:137-145.
Tahir,  N.I.M.,  2004. Extraction  and Screening of Antioxidants in Metroxylon sagu. Thesis . Biotechnology  Progamme,  School  of
Science  &  Technology.  Universiti
Malaysia Sabah
Teja,  W.A.,  I.  Sindi  P.,A.  Ayucitra,  dan L.E.K.  Setiawan.  2008. Karakteristik Pati  Sagu  dengan  Metode  Modifikasi
Asetilasi dan Cross-Linking . J. Teknik Kimia Indonesia . 7 : 836-843.
Wade, L.G. 2006. Organic Chemistry . Sixth edition.  New  Jersey  :  Pearson
Education International.
Winarsi,  H.  2007. Antioksidan  Alam  dan Radikal Bebas . Yogyakarta. Kasinus