## AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DAN KOMPONEN BIOAKTIF KEONG IPONG-IPONG (Fasciolaria salmo)
Antioxidant Activity and Bioactive Compound of Ipong-Ipong Snail (Fasciolaria salmo)

## Nurjanah*, Asadatun Abdullah, Azwin Apriandi
Departemen Teknologi Hasil Perairan, Fakultas perikanan dan Ilmu kelautan, Institut Pertanian Bogor
*Korespondensi: Jalan Lingkar Akademik, Kampus IPB Dramaga, Kabupaten Bogor 16680, telp (0251)8622915, fax (0251) 8622916 email: inun_thp10@yahoo.com

## Abstract
Ipong-ipong snail ( Fasciolaria salmo ) is one of sea water gastropods that have not been utilized optimally. People  believe  that  the  snail  has  the  ef cacies  for  increasing  stamina  and  vitality.  However,  scienti c  data supporting the ef cacy of this snail has not been elucidated yet. The purposes of this research was determined the yield, chemical content (water, protein, fat, ash, acid insoluble ash and carbohydrates), bioactive components and antioxidant activity. The yield of shells, meat, and viscera were 69.69%, 22.08% and 8.22%, respectively. Water content, protein, fat, ash, acid insoluble ash and carbohydrates were 73.075%, 18.28%, 0.575%, 2.77%, 0.15% and 5.2%, respecitevely. Six bioactive components were detected i.e alkaloids, steroids, reducing sugars, carbohydrates, peptides and amino acids. Antioxidant activity using DPPH method obtained the result IC 50 of the meat extract with chloroform, ethyl acetate and methanol solvent were 9210 ppm, 6825 ppm, 1513.8 ppm, respectively. Meanwhile for viscera extract were. 2825 ppm, 4600 ppm and 994,47 ppm, respectively.
Keywords: antioxidants, bioactives, Fasciolaria salmo , proximate, yield.

## Abstrak
Keong ipong-ipong ( Fasciolaria salmo ) merupakan salah satu Gastropoda air laut yang belum dimanfaatkan oleh masyarakat secara optimal. Masyarakat mempercayai keong ini berkhasiat untuk meningkatkan stamina dan vitalitas,  tetapi  data  ilmiah  yang  mendukung  belum  ada.  Tujuan  penelitian  ini  adalah  menentukan  rendemen, kandungan kimia (air, protein, lemak, abu, abu tidak larut asam dan karbohidrat), komponen bioaktif dan aktivitas antioksidan dengan metode DPPH. Rendemen cangkang, daging dan jeroan adalah 69,69%, 22,08% dan 8,22%. Kandungan air, protein, lemak, abu, abu tidak larut asam dan karbohidrat secara berurutan yaitu sebesar 73,075%, 18,28%,  0,575%,  2,77%,  0,15%  dan  5,2%.  Senyawa  kimia  yang  terdeteksi  antara  lain  alkaloid,  steroid,  gula preduksi,  karbohidrat,  peptida  dan  asam  amino. Aktivitas  antioksidan  dengan  metode  DPPH,  di  dapatkan  nilai IC50 dari ekstrak daging dan jeroan keong ipong-ipong dengan  pelarut kloroform, etil asetat dan methanol secara berurutan sebesar, 9210 ppm, 6825 ppm, 1513,8 ppm, dan 2825 ppm, 4600 ppm, 994,47 ppm.
Kata kunci: antioksidan, bioaktif, Fasciolaria salmo , proksimat, rendemen.

## PENDAHULUAN
Radikal  bebas  merupakan  salah  satu  bentuk senyawa  reaktif,  yang  secara  umum  diketahui sebagai senyawa yang memiliki elektron yang tidak berpasangan  di  kulit  terluarnya.  Adanya  radikal bebas di dalam tubuh manusia dapat menimbulkan berbagai penyakit yaitu serangan jantung, kanker, stroke, gagal ginjal, hypertensi dan penyakit kronik lainnya  (Tuminah  2000;  Bernardi et  al. 2007;
Prasad et al . 2009;  Saha et al 2008). Radikal bebas dapat  ditangkal  atau  diredam  dengan  pemberian antioksidan  atau  mengkonsumsi  antioksidan (Halliwell  2007;  Kubola  dan  Siriamornpun 2008;  Escudero et  al 2008;  Mohsen  dan Ammar 2009).  Konsumsi  antioksidan  dalam  jumlah memadai  dapat  mencegah  penyakit  degeneratif yaitu  kardiovaskuler,  kanker,  aterosklerosis,  dan lain-lain.  Konsumsi  makanan  yang  mengandung antioksidan  juga  dapat  meningkatkan  status
imunologis  serta  dapat  menghambat  timbulnya penyakit degeneratif akibat penuaan dan meningkatkan kesehatan (Droge 2002; Lee et al. 2004; Valko et al . 2007)
Antioksidan  terdapat  secara  alami  dalam hampir  semua  bahan  pangan,  baik  yang  berasal dari  daratan    maupun  perairan.  Bahan  pangan yang  berasal  dari  perairan  kelas  Gastropoda, banyak  mengandung  bioaktif  yang  berperan sebagai antioksidan. Jenis-jenis Gastropoda yang telah diteliti dan mengandung antioksidan antara lain, lintah laut ( Discodoris sp.) (Nurjanah et al . 2011), Lobiger serradifalci dan Oxynoe olivacea (Cavas  2004), Viviparus  ater (Campanella et al. 2005), Lymnaea  stagnalis (Vorontsova et  al. 2010),  dan Pleuroploca  trapezium (Anand et  al. 2010).  Gastropoda  juga  mengandung  berbagai macam komponen bioaktif yang bermanfaat bagi kesehatan  manusia.  Komponen  bioaktif  tersebut antara lain  alkaloid, steroid,  avonoid, saponin, dan fenol hidrokuinon (Harborne 1984).
Keong  ipong-ipong  ( Fasciolaria  salmo ) merupakan salah satu jenis Gastropoda air laut yang pemanfaatannya  belum  banyak.  Keong  ipong- ipong  dipercayai  dapat  meningkatkan  stamina tubuh  serta  vitalitas, tetapi  data-data ilmiah yang mendukung khasiat dari keong tersebut belum ada, sehingga  perlu  dilakukan  pengkajian  mengenai komponen  bioaktif  yang  terkandung  di  dalam tubuh  keong  ipong-ipong.  Komponen-komponen bioaktif  tersebut  mungkin  memiliki  aktivitas sebagai  antioksidan.  Pengkajian  ini  bermanfaat untuk  pengembangan  dan  pemanfaatan  keong ipong-ipong  secara  optimal  dimasa  yang  akan datang.
Tujuan penelitian adalah menentukan rendemen, kandungan zat gizi, aktivitas antioksidan  dan  komponen bioaktif  yang terkandung  dalam  keong  ipong-ipong  ( F.  salmo ) dari Cirebon, Jawa Barat.

## MATERIAL DAN METODE

## Bahan dan Alat
Bahan  utama yang digunakan  untuk penelitian ini  adalah  keong  ipong-ipong  ( F.  salmo ). 1,1-difenil-2-pikrilhidrazil  (DPPH),  antioksidan
sintetik BHT (Butylated Hydroxytoluena) sebagai pembanding.  Alat-alat  utama  yang  diperlukan dalam penelitian ini meliputi vacuum evaporator, spektrofotometer UV-VIS Hitachi U-2800.

## Metode Penelitian
Penelitian  ini  dilakukan  beberapa  pengukuran antara  lain,  perhitungan  rendemen,  pengujian komposisi  kimia,  uji   tokimia  dan  pengukuran aktivitas antioksidan dengan metode DPPH.

## Pengambilan bahan baku
Bahan  baku  keong  ipong-ipong  ( Fasciolaria salmo )  diambil  dari  perairan  Cirebon.  Keong ipong-ipong  dibeli  dari  berbagai  nelayan  di sekitar  wilayah  perairan  Cirebon.  Keong  ipong- ipong merupakan salah satu komoditas favorit di lingkungan  masyarakat.  Ukuran  panjang  keong ipong-ipong yang digunakan dalam penelitian ini berkisar antara 8-10 cm dan diambil 30 ekor untuk dijadikan sampel  pada perhitungan rendemen.

## Perhitungan rendemen
Rendemen  cangkang,  daging  serta  jeroan sampel  keong  ipong-ipong  dihitung  dengan menggunakan rumus:
Rendemen (%) = (Bobot contoh (g)/Bobot total (g)) x 100%

## Analisis proksimat
Analisis proksimat dilakukan untuk mengetahui  kandungan  kimia  yang  terdapat di  dalam  tubuh  keong  ipong-ipong.  Analisis proksimat  yang  dilakukan  anatara  lain  uji  kadar air, lemak, protein, abu (AOAC  2005), abu tidak larut  asam  (BSN  2000),  serta  karbohidrat  diukur secara by diference .

## Analisis antioksidan dengan Metode DPPH Ekstraksi bahan aktif (Quinn 1988)
Tahap  ekstraksi  ini  ada  beberapa  langkah, antara lain  persiapan sampel dan ekstraksi bahan aktif. Pada tahap persiapan sampel, daging keong ipong-ipong  dan  jeroan  yang  telah  diambil  dari perairan  pantai  kota  Cirebon,  segera dikeringkan dengan  panas  matahari  selama  3  hari.  Proses ekstraksi dilakukan dengan cara, sampel sebanyak 25  g  yang  telah  dihancurkan,  dimaserasi  dengan
pelarut  kloroform   p.a.  sebanyak  100  mL selama 48  jam  dengan  diberi  goyangan  menggunakan orbital shaker 8 rpm. Hasil maserasi yang berupa larutan  kemudian  disaring  dengan  kertas  saring Whatman  42  sehingga  didapat   ltrat  dan  residu. Residu  yang  dihasilkan  selanjutnya  dimaserasi dengan  etil  asetat  p.a.  100  mL  selama  48  jam dengan diberikan goyangan dengan orbital shaker 8  rpm,  sedangkan   ltrat  ekstrak  kloroform  yang diperoleh  dievaporasi  hingga  pelarut  memisah dengan  ekstrak  menggunakan rotary  vacuum evaporator pada suhu  50 ºC.
Hasil  proses  maserasi  ke-2  selanjutnya disaring  dengan  kertas  Whatman  42.  Residu yang  dihasilkan  dilarutkan  dengan  metanol  p.a. sebanyak 100  mL dan dimaserasi  selama  48  jam dengan  diberi  goyangan  menggunakan  orbital shaker  8  rpm.  Filtrat  ekstrak  etil  asetat  yang diperoleh  dievaporasi  sehingga  semua  pelarut terpisah dari ekstrak menggunakan rotary vacuum evaporator pada suhu 50 ºC. Hasil maserasi ke-3 dengan  pelarut  metanol,  disaring  dengan  kertas saring Whatman 42. Filtrat ekstrak metanol yang diperoleh  dievaporasi  sehingga  semua  pelarut terpisah dari ekstrak menggunakan rotary vacuum evaporator pada suhu 50 ºC, sedangkan residu yang tersisa  dibuang.  Proses  ini  akan  menghasilkan ekstrak  kloroform, ekstrak etil asetat  dan ekstrak metanol yang kental.

## Uji Aktivitas Antioksidan (DPPH) (Blois 1958)
Ekstrak  kasar  keong  ipong-ipong  dari  hasil ekstraksi bertingkat menggunakan pelarut kloroform p.a. (non polar), pelarut etil asetat p.a. (semi  polar),  dan  pelarut  metanol  p.a.  (polar), dilarutkan dalam metanol p.a. dengan konsentrasi 200, 400, 600 dan 800 ppm. Antioksidan sintetik BHT digunakan sebagai pembanding dan kontrol positif,  dibuat  dengan  cara  dilarutkan  dalam pelarut  metanol  p.a.  dengan  konsentrasi  2,  4,  6 dan 8 ppm. Larutan DPPH yang akan digunakan, dibuat  dengan  melarutkan  kristal  DPPH  dalam pelarut metanol dengan konsentrasi 1 mM. Proses pembuatan larutan DPPH 1 mM dilakukan dalam kondisi  suhu  rendah  dan  terlindung  dari  cahaya matahari.
Larutan  ekstrak  dan  larutan  antioksidan
pembanding  BHT  yang  telah  dibuat,  masing- masing  diambil  4,5  mL  dan  direaksikan  dengan 500 µL larutan DPPH 1 mM dalam tabung reaksi yang  berbeda  dan  telah  diberi  label.  Campuran tersebut  kemudian  diinkubasi  pada  suhu  37 o C  selama  30  menit  dan  diukur  absorbansinya dengan  menggunakan  spektrofotometer  UV-VIS Hitachi U-2800 pada panjang gelombang 517 nm. Absorbansi dari larutan blanko juga diukur untuk melakukan  perhitungan  persen  inhibisi.  Larutan blanko dibuat dengan mereaksikan 4,5 mL pelarut metanol  dengan  500  µL  larutan  DPPH  1  mM dalam  tabung  reaksi.  Larutan  blanko  ini  dibuat hanya satu kali ulangan saja. Setelah itu, aktivitas antioksidan  dari  masing-masing  sampel  dan antioksidan pembanding BHT dinyatakan dengan persen  inhibisi,  yang  dihitung  dengan  formulasi sebagai berikut:
% inhibisi = (A blanko – A sampel) x 100%
A blanko
Nilai  konsentrasi  sampel  (ekstrak  ataupun antioksidan  pembanding  BHT)  dan  persen inhibisinya  diplot  masing-masing  pada  sumbu  x dan  y  pada  persamaan  regresi  linear.  Persamaan regresi  linear  yang  diperoleh  dalam  bentuk persamaan y  = a +  bx, digunakan  untuk  mencari nilai  IC 50 (inhibitor  concentration  50%)  dari masing-masing sampel dengan menyatakan nilai y sebesar 50 dan nilai x yang akan diperoleh sebagai IC 50 . Nilai IC 50 menyatakan besarnya konsentrasi larutan  sampel  (ekstrak  ataupun  antioksidan pembanding  BHT)  yang  dibutuhkan  untuk mereduksi radikal bebas DPPH sebesar 50%.

## Uji Fitokimia (Harborne 1984)

## a. Alkaloid
Sejumlah  sampel  dilarutkan  dalam  beberapa tetes asam sulfat 2 N kemudian diuji dengan tiga pereaksi  alkaloid  yaitu,  pereaksi  Dragendorff, pereaksi  Meyer,  dan  pereaksi  Wagner.    Hasil  uji dinyatakan  positif  bila  dengan  pereaksi  Meyer terbentuk  endapan  putih  kekuningan,  endapan coklat dengan pereaksi Wagner dan endapan merah hingga jingga dengan pereaksi Dragendorff.
b. Steroid/ triterpenoid
Sejumlah  sampel  dilarutkan  dalam  2  mL
kloroform  dalam  tabung  reaksi  yang  kering,  lalu ditambahkan  10  tetes  anhidra  asetat  dan  3  tetes asam sulfat pekat.  Terbentuknya larutan berwarna merah  untuk  pertama  kali  kemudian  berubah menjadi biru dan hijau menunjukkan reaksi positif.
c. Flavonoid
Sejumlah sampel ditambahkan serbuk magnesium  0,1  mg  dan  0,4  mL  amil  alkohol (campuran  asam  klorida  37%  dan  etanol  95% dengan  volume  yang  sama)  dan  4  mL  alkohol kemudian  campuran  dikocok.  Terbentuknya warna  merah,  kuning  atau  jingga  pada  lapisan amil alkohol menunjukkan adanya  avonoid.
d. Saponin (uji busa)
Saponin dapat dideteksi dengan uji busa dalam air panas.  Busa yang stabil selama 30 menit dan tidak  hilang  pada  penambahan  1  tetes  HCl  2  N menunjukkan adanya saponin.
e. Fenol Hidrokuinon (pereaksi FeCl 3 )
Sampel sebanyak 1 gram diekstrak dengan 20 mL etanol 70%.  Larutan yang dihasilkan diambil sebanyak  1  mL  kemudian  ditambahkan  2  tetes larutan FeCl 3 5%.  Terbentuknya warna hijau atau hijau  biru  menunjukkan  adanya  senyawa  fenol dalam bahan.
f. Uji Molisch
Larutan  sampel  sebanyak  1  mL  diberi  2 tetes  pereaksi  Molish  dan  1  mL  asam  sulfat pekat  melalui  dinding  tabung.    Uji  positif  yang menunjukkan adanya karbohidrat ditandai terbentuknya kompleks berwarna ungu diantara 2 lapisan cairan.
g. Uji Benedict
Larutan  sampel  sebanyak  8  tetes  dimasukkan ke  dalam  5  mL  pereaksi  Benedict.    Campuran dikocok  dan  dididihkan  selama  5  menit. Terbentuknya  warna  hijau,  kuning,  atau  endapan merah bata menunjukkan adanya gula pereduksi.
h. Uji Biuret
Larutan  sampel  sebanyak  1  mL  ditambahkan 4 mL pereaksi Biuret. Campuran dikocok dengan seksama.    Terbentuknya  larutan  berwarna  ungu menunjukkan hasil uji positif adanya peptida.
i. Uji Ninhidrin
Larutan  sampel  sebanyak  2  mL  ditambah beberapa tetes larutan Ninhidrin    0,1%.  Campuran dipanaskan dalam penangas air selama 10 menit. Terjadinya  larutan  berwarna  biru  menunjukkan reaksi positif terhadap adanya asam amino.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Rendemen
Nilai  rendemen  digunakan  untuk  mengetahui nilai ekonomis suatu produk atau bahan. Rendemen keong ipong-ipong  meliputi rendemen cangkang, daging, dan jeroan disajikan pada Gambar 1.

## Gambar 1 Rendemen keong ipong-ipong
Rendemen merupakan persentase perbandingan antara berat bagian bahan yang dapat dimanfaatkan dengan berat total bahan (Kusumawati et al. 2008). Rendemen cangkang keong ipong-ipong  memiliki nilai  yang  paling  besar  dibandingkan  bagian- bagian  lainnya  yaitu  sebesar  69,69%.  Rendemen isi  cangkang  (daging  dan  jeroan)  sebesar  30% terdiri  atas  22,08%  daging  dan  8,22%  jeroan.  Isi cangkang keong ipong-ipong berpotensi dijadikan lauk  pauk  sebagai  sumber  protein  hewani  dan asam amino.

## Komposisi Kimia
Keong ipong-ipong memiliki kadar air sebesar 73,075%, kadar lemak 0,575% serta kadar protein 18,28%.  Kadar  karbohidrat  didapatkan  sebesar 5,2%  dilakukan  dengan  metode by  defference . Kadar air  yang tinggi menyebabkan kadar lemak rendah  secara  proporsional.  Keong  ipong-ipong memiliki  kadar  abu  2,77%.  Abu  tidak  larut asam  pada  keong  ipong-ipong  memiliki  kadar yang  rendah  sehingga  aman  untuk  dikonsumsi. Nilai  abu  tidak  larut  asam  yang  diperoleh  pada penelitian  ini  masih  di  bawah  1%  seperti  yang disyaratkan  untuk  produk  kappa-karaginan food
grade (Basmal et al. 2003).

## Ekstrak Kasar dan Komponen Bioaktif
Komponen  bioaktif  yang  paling  banyak terkandung  dalam keong  ipong-ipong  ini merupakan  komponen  bioaktif  yang  bersifat polar karena dapat larut pada pelarut  polar, yaitu metanol.  Komponen  bioaktif  yang  bersifat  non polar dan semi polar terekstrak dalam jumlah yang kecil.  Hasil  ekstraksi  komponen  bioaktif  keong disajikan pada Gambar 2.
Hasil  perhitungan  rendemen  untuk  ekstrak daging  dan  jeroan,  ekstrak  kloroform  dari  kedua ekstrak  memiliki  rendemen  terkecil.  Hasil
penelitian  yang  dilakukan  Salamah et  al. (2008) menunjukkan maserasi dengan jenis pelarut yang berbeda  akan  menghasilkan  rendemen  ekstrak yang  berbeda  pula.  Rendemen  ekstrak  dari  suatu pelarut  dipengaruhi  sifat  kepolaran  dari  pelarut, suhu,  waktu  ekstraksi  serta  tingkat  kepolaran dari  jumlah  bahan  yang  diekstrak  yang  memiliki polaritas yang sama (Row dan Jin 2005)

## Senyawa Kimia
Hasil  uji   tokimia  dari  ekstrak  kasar  daging dan  jeroan  keong  ipong-ipong  menunjukkan bahwa  keong  ipong-ipong  mengandung  6  dari 9  komponen  bioaktif  yang  diuji  dengan  metode  tokimia  Harborne  (1984).  Komponen  bioaktif tersebut disajikan pada Tabel 1.
Komponen  bioaktif  yang  terkandung  pada ekstrak kasar daging dan jeroan keong ipong-ipong adalah  alkaloid,  steroid,  protein,  gula  pereduksi, peptide  dan  karbohidrat.  Steroid  sangat  dominan dan terdeteksi disemua ekstrak keong ipong-ipong. Steroid  yang  terdeteksi  pada  ekstrak  daging  dan jeroan  keong ipong-ipong  ini diduga merupakan hormon  adrenal  dan  hormon  seks  (progesterone, 17-β-estradiol,  testosterone,  4-androstene-dione dan  cortisol)  seperti  steroid  yang  terdeteksi  pada Achatina fulica yang juga merupakan Gastropoda (Bose et al 1997).
Tabel 1 Hasil uji  tokimia ekstrak kasar keong ipong-ipong
Uji Ekstrak Kloroform Etil Asetat Metanol Daging Jeroan Daging Jeroan Daging Jeroan Alkaloid: a. Dragendorf - - + - + + b. Meyer - + - - - - c. Wegner - - + + + + Steroid ++ ++ + + + + Flavonoid - - - - - - Saponin - - - - - - Fenol Hidroquinon - - - - - - Molisch + + + + + + Benedict - - - - + - Biuret - - - - ++ ++ Ninhidrin - - - - ++ ++
Keterangan: +  : Lemah ++: Kuat
Gambar 2 Rendemen ekstrak kasar keong ipong-ipong untuk daging ( ) dan jeroan ( )

## Aktivitas Antioksidan
Pengujian  aktivitas  antioksidan  dilakukan dengan  metode  DPPH  (Hanani et  al 2005).
Prinsip metode DPPH ini yaitu menangkap atom H  yang  didonorkan  oleh  antioksidan,  sehingga menjadi  radikal  yang  reaktivitasnya  rendah (Alma et al . 2003; Karioti et al . 2004; Kordali et al .  2005).  Antioksidan  BHT  digunakan  sebagai pembanding  dan  kontrol  positif.  Parameter  yang umum digunakan untuk menginterpretasikan hasil pengujian  dari  DPPH  adalah  nilai  IC 50 .  Semakin kecil  nilai  IC 50 berarti  aktivitas  antioksidannya semakin  tinggi  (Molyneux  2004).  Nilai  IC 50 dari larutan BHT disajikan pada tabel 2.
BHT memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat (< 50 ppm). Ekstrak kasar keong ipong-ipong yang  diuji  juga  memiliki  aktivitas  antioksidan, meskipun masih tergolong sangat lemah. Ekstrak keong  ipong-ipong  tersebut  memiliki  kekuatan penghambat  yang  berbeda-beda  antara  yang  satu dengan  yang  lainnya.  Nilai    IC 50 ekstrak  kasar daging dan jeroan disajikan pada Tabel 3
Persen inhibisi tertinggi selalu dihasilkan oleh larutan  yang  mengandung  konsentrasi  ekstrak kasar daging dan jeroan yang terbesar yaitu larutan dengan  konsentrasi  800  ppm,  sedangkan,  persen inhibisi  terendah  selalu  dihasilkan  oleh  larutan yang mengandung konsentrasi atau ekstrak kasar daging  dan  jeroan  paling  sedikit  yaitu  larutan dengan konsentrasi 200 ppm (pada masing-masing ekstrak kasar daging dan jeroan keong ipong-ipong.
Semakin  tinggi  konsentrasi  ekstrak  kasar  daging dan jeroan keong ipong-ipong yang ditambahkan, maka  semakin  tinggi  pula  persen  inhibisi  yang akan  dihasilkan.  Pernyataan  ini  sesuai  dengan hasil  penelitian  yang  dilakukan  oleh  Hanani et al. (2005),  yang  menyatakan  bahwa  persentase penghambatan  (persen inhibisi) terhadap aktivitas radikal bebas akan ikut meningkat seiring dengan meningkatnya konsentrasi ekstrak.
Ekstrak  metanol  daging  dan  jeroan  keong ipong-ipong  memiliki  aktivitas  antioksidan  yang lebih besar dari dua ekstrak yang lainnya, ditandai dengan  nilai IC 50 yang  terkecil, yaitu 1513,8 dan 994,47  ppm,  sedangkan  ekstrak  kloroform  dari daging  keong  ipong-ipong  merupakan  ekstrak yang  memiliki  aktivitas  antioksidan  yang  paling lemah,  hal  ini  terbukti  dari  nilai  IC 50 -nya  yang terbesar, yaitu 9210 ppm, akan tetapi pada ekstrak kasar  jeroan  dari  ekstrak  etil  asetat  memiliki aktivitas  antioksidan  yang  paling  lemah  yaitu sebesar 4600 ppm.

## KESIMPULAN
Ekstrak  kasar  daging  dan  jeroan  keong ipong-ipong  memiliki  aktivitas  antioksidan  yang sangat  lemah  jika  dibandingkan  dengan  aktivitas antioksidan BHT. Ekstrak kasar daging dan jeroan keong  ipong-ipong  mengandung  6  komponen bioaktif  yaitu  alkaloid,  steroid,  karbohidrat,  gula pereduksi,  peptida  dan  asam  amino.  Adanya kandungan  steroid  pada  keong  ipong-ipong membuktikan  khasiat  dari  keong  tersebut  secara empiris  yang  dapat  meningkatkan  stamina  tubuh dan vitalitas.

## DAFTAR PUSTAKA
Alma  MH,  Mavi  A,Yildirim  A,  Digrak  M,  Hirata  T. 2003.  Screening  chemical  composition  and  in vitro antioxidant and antimicrobial activities of the
Tabel 2 Hasil uji aktivitas antioksidan larutan BHT
Sampel BHT (ppm) IC 50 (ppm) 2 4 6 8 Inhibisi (%) 12,55 23,67 79,37 89,45 4,91
Tabel 3 Hasil uji aktivitas antioksidan larutan ekstrak kasar
Jenis Pelarut % Inhibisi IC 50 (ppm) Ektrak Daging (ppm) Ekstrak Jeroan (ppm) Ekstrak daging Ekstrak Jeroan 200 400 600 800 200 400 600 800 Kloroform 22,90 24,14 24,61 25,19 13,49 15,30 21,19 21,38 9210 2825 Etil Asetat 23,85 24,23 24,42 26,52 15,39 15,87 17,96 20,24 6825 4600 Metanol 33,93 34,60 38,02 41,82 19,96 28,13 33,84 43,63 1513,8 994,47
essential oils from Origanum syriacum L. growing in Turkey. Biological and Pharmaceutical Bulletin
26:1725-1729
Anand  P,  Chellaram  C,  Kumaran  S,  Shanthini  CF. 2010.  Biochemical  composition  and  antioxidant activity of Pleuroploca trapezium meat. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research . 2(4):526-
535
[AOAC]  Association  of  Of cial  Analytical  Chemist.
2005. Of cial Method of Analysis of The Association of  Of cial  Analytical  of  Chemist.    Arlington :  The
Association of Of cial Analytical Chemist, Inc. [BSN] Badan Standardisasi Nasional. 2000. T eh Kering Dalam Kemasan . Jakarta: SNI-01-3836-2000
Basmal  J,  Syarifudin,  Ma’ruf  WF.  2003.  Pengaruh konsentrasi  larutan  potasium  hidroksida  terhadap mutu  kappa-karaginan  yang  diekstraksi  dari Eucheuma  cottonii . Jurnal  Penelitian  Perikanan Indonesia 9(5):95-103.
Bernardi  APM,  Lopez-Alarcon  C,  Aspee  A,  Rech  S, Poser  GLV,  Bride  R,  Lissp  E.  2007.  Antioxidant activity  of   avonoids  isolated  from Hyperincum ternum. Journal  of  the  Chilean  Chemical  Society 52(4):1326-1329.
Blois MS.1958. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature 181: 1199-1200. Bose R, Majumdar C,  Bhattacharya S. 1997. Steroids in Achatina  fulica (Bowdich):  steroid  pro le  in haemolymph  and  in  vitro  release  of  steroids  from endogenous  precursors  by  ovotestis  and  albumen gland. Component Biochemical Physiology 116C(3):179-182.
Campanella L, Gatta T, Ravera O. 2005. Relationship between  anti-oxidant  capacity  and  manganese accumulation  in  the soft tissues of two freshwater molluscs: Unio pictorum mancus (Lamellibranchia, Unionidae)  and Viviparus  ater (Gastropoda, Prosobranchia). Journal  of  Limnology 64(2):153- 158
Cavas  L,  Yurdakoc  K,  Yokes  B.  2004.  Antioxidant status  of Lobiger  serradifalci and  O xynoe olivacea (Opisthobranchia,  Mollusca). Journal of  Experimental  Marine  Biology  and  Ecology 314:227-235
Droge  W.  2002.  Free  radicals  in  the  physiological control of cell function. Physiological Reviews 82: 47–95
Escudero MR, Escudero FR, Remsberg CM, Takemoto JK,  Davies  NM,  Yanez  JA.  2008.  Identi cation of  polyphenols  and  antioxidant  capacity  of Piper aduncum L. The  Open  Bioactive  Compounds Journal 1:18-21.
Halliwell B. 2007. Dietary polyphenols: good, bad, or indifferent for your health. Journal Cardiovascular Research 73:341–347.
Hanani  E,  Mun’im  A,  Sekarini  R.  2005.  Identi kasi senyawa antioksidan dalam spons Callyspongia sp.
dari Kepulauan Seribu. Majalah Ilmu Kefarmasian 2(3):127-133. Harborne JB. 1984. Phytochemical methods . Ed ke-2. New York: Chapman and Hall.
Karioti    A,  Hadjipavlou  LD,  Mensah  ML,  Fleischer
TC, Skaltsa H. 2004. Composition and antioxidant activity  of  the essential oils  of Xylopia aethiopica (Dun)  A.  Rich.  (Annonaceae)  leaves,  stem  bark, root  bark,  and  fresh  and  dried  fruits,  growing  in Ghana. Journal of Agricultural and Food Chemistry
52:8094-8098
Kordali S, Cakir A, Mavi A, Kilic H, Yildirim A. 2005.
Screening of chemical composition and antifungal and  antioxidant  activities  of  the  essential  oils from  three  Turkish  Artemisia  species.  J ournal  of Agricultural and Food Chemistry 53:1408–1416 Kubola J, Siriamornpun S. 2008. Phenolic contents and antioxidant  activities  of    bitter  gourd  ( Momordica charantia L.) leaf,  stem  and  fruit  fraction extracts in vitro. Food Chemistry 110:881–890.
Kusumawati  R,  Tazwir,  Wawasto  A.  2008.  Pengaruh perendaman dalam  asam  klorida terhadap  kualitas gelatin  tulang  kakap  merah  ( Lutjanus sp.). Jurnal Pascapanen  dan  Bioteknologi  Kelautan  dan Perikanan 3(1):1-6.
Lee  J,  Koo  N,  Min  DB.  2004.  Reactive  oxygen species,  aging,  and  antioxidative  nutraceuticals. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety 3:21-33
Mohsen  SM,  Ammar  ASM.  2009.  Total  phenolic contents  and  antioxidant  activity  of  corn  tassel extracts. Journals Food Chemistry 112:595–598.
Molyneux  P.  2004.  The  use  of  the  stable  free  radical dyhenylpicrylhydrazil  (DPPH)  for  estimating antioxidant  activity. Journal  of  Science  and Technology : 26:211-219
Nurjanah,  Ha luddin,  Nurhayati T,  Nugraha  R.  2011.
Nutritional And Antioxidant Properties Of Sea Slug ( Discodoris Sp.)  From  Pamekasan  Indonesia  Sea Water. Turkish  Journal  of  Fisheries  and  Aquatic Science. in press
Prasad  NP,  Yang  B,  dong  X,  Jiang  G,  Zhang  H, Xie  H,  Jiang  Y.  2009.  Flavonoid  contents  and antioxidant  activities  from  Cinnamomum  sp. Journals  Innovative  Food  Science  and  Emerging Technologies 10:627-632. Quinn  RJ.  1988. Chemistry  of  Aqueous  Marine Extracts:  Isolation  Techniques  in  Bioorganic Marine Chemistry, Vol. 2.Verlag Berlin Heidelberg: Springer
Row    KH,    Jin    Y.    2005.    Recovery    of    catechin compounds  from  Korean  tea  by solvent extraction. Journal of Bioresource Technology 97: 790-793. Saha MR, Hasan SMR , Akter R , Hossain MM , Alam MS  , Alam  MA,  Mazumder  MEH.  2008.  In  vitro free radical scavenging activity of methanol extract of the leaves of Mimusops elengi linn. Bangladesh
Journal of Veteriner Medicine 6 (2):197-20 Salamah  E,  Ayuningrat  E,  Purwaningsih  S.  2008. Penapisan  awal  komponen  bioaktif  dari  kijing taiwan ( Anadonta woodiana Lea.) sebagai senyawa antioksidan. Buletin  Teknologi  Hasil  Perikanan 11(2):119-132.
Tuminah  S.  2000.  Radikal  Bebas  dan  Antioksidan- kaitannya  dengan  nutrisi  dan    penyakit  kronis. Cermin Dunia Kedokteran 128:49-51
Valko  M,  Leibfritz  D,  Moncol  J,  Cronin  MT,  Mazur
M,Telser J. 2007. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. International  Journal  of  Biochemistry  and  Cell Biology 39:44-84
Vorontsova  YA,  Yurlova  NI,  Vodyanitskaya  SN,
Glupov  VV.  2010.  Activity  of  detoxifying  and antioxidant  enzymes  in  the  pond  snail Lymnaea stagnalis (Gastropoda: Pulmonata) during invasion by  Trematode  Cercariae. Journal  of  Evolutionary Biochemistry and Physiology 46(1):28-34