## PENGGUNAAN ZAT PENGATUR TUMBUH DALAM SAMBUNG PUCUK KAKAO
APPLICATION OF PLANT HORMONES IN COCOA GRAFTING
Yuda Purwana Roswanjaya * , Delvi Maretta, dan Djatmiko Pinardi Pusat Teknologi Produksi Pertanian, Badan Pengkajian dan Penerapan Teknologi LAPTIAB, Kawasan Puspitek Serpong, Tangerang Selatan 15314 - Indonesia
*Korespondensi: yuda.purwana@bppt.go.id

## A BSTRAK
Teknik sambung pucuk banyak dilakukan oleh petani kakao  karena dinilai  mudah, murah dan tidak membutuhkan sarana dan peralatan khusus. Hasil kajian peran hormon dalam interaksi batang bawah (rootstock) dan batang atas (scion) pada proses penyambungan dapat  dimanfatkan untuk  penyempurnaan  teknik  penyambungan  tanaman  kakao.  Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah untuk  mengetahui pengaruh zat  pengatur  tumbuh  tanaman  (ZPT) golongan  sitokinin,  auksin  dan giberelin terhadap pembentukan tunas pada batang atas tanaman sambung pucuk kakao. Penelitian terdiri  dari  dua  percobaan  menggunakan  rancangan  acak  kelompok.  Sebagai  perlakuan  pada percobaan pertama adalah 12 taraf kombinasi ZPT golongan sitokinin dan auksin sedangkan pada percobaan kedua adalah 12 taraf kombinasi ZPT golongan sitokinin dan giberelin. Teknik sambung konvensional  tanpa  penggunaan  ZPT  digunakan  sebagai  kontrol.  Hasil  penelitian  menunjukkan bahwa  zat  pengatur  tumbuh  yang  diaplikasikan  pada  entres  sehari  sebelum  penyambungan berpengaruh nyata terhadap persentase pembentukan tunas. Persentase pembentukan tunas  pada batang  atas  tanaman  hasil  sambung  lebih  tinggi  pada  perlakuan  aplikasi  sitokinin  tanpa penambahan  auksin  maupun  giberelin.  Perlakuan  aplikasi  ZPT  belum  berpengaruh  terhadap jumlah daun, jumlah cabang dan panjang tunas baru pada batang atas.
Kata kunci: ZPT, batang bawah, tunas trubus, sitokinin, sambung pucuk

## ABSTRACT
Plant grafting is widely used by farmers in the cocoa nursery. It is considered a simple and cheapest  technique  and  not  requires  special  equipment.  The  study  of  hormonal  role  in  the interaction  of  rootstock  and  scion  can  be  used  as  references  to  improve  the  plant  grafting techniques.    This  research  has  studied  the  effect  of  plant  hormones  (cytokinin,  auxin,  and gibberellin) application in the shoot induction of scion in cocoa grafting ( Theobroma cacao L). The study was conducted in two experiments that were arranged in a randomized block design. In the first  and  second  experiments,  12-degree  combinations  of  cytokinin  and  auxin  and  12-degree combinations  of  cytokinin  and  gibberellin  were  studied.  The  conventional  technique  without hormones  application  was  used  as  a  control.    The  result  shows  that  the  percentage  of  shoot induction  on  scion  was  significantly  affected  by  the  application  of  the  hormones  a  day  before grafting. The percentage of shoot formation was higher in the treatment of only cytokinin without auxin or gibberellin. Vegetative growth, such as the number of leaves, number of shoots, and length of shoot, was not affected by the hormones treatment.
Keywords: hormone, scion, shoot, cytokinin, grafring

## PENDAHULUAN
Hormon  memiliki  peran  yang sangat  penting  dalam  pertumbuhan  dan
perkembangan  tanaman  baik  pada  fase vegetatatif  maupun  generatif.  Lima  jenis hormon  utama  yang  berperan  dalam
pertumbuhan dan perkembangan tanaman  adalah:  auksin,  sitokinin, giberelin,  etilen  dan  asam  absisat  (Asra et al. , 2020). Fungsi auksin pada tanaman diantaranya adalah
mempercepat
pembesaran  sel  dan  berperan  pada diferensiasi  jaringan  angkut  phloem  dan xylem  (Brumos et  al. ,  2018),  sedangkan fungsi giberelin (GA1) adalah menstimulasi  pembelahan  sel  (Sinay, 2018).  Sitokinin  bersama  auksin  dengan perbandingan tertentu dapat
mempercepat  pembelahan  sel  dan morfogenesis  (Schaller et  al. ,  2015)
sedangkan  Etilen  berfungsi  pada  proses pematangan buah dan memacu pertumbuhan dan perkembangan organ- organ tanaman (Advinda, 2018). Berbeda dengan keempat jenis hormon sebelumnya, asam absisat adalah
hormon yang menghambat pertumbuhan dan  perkembangan  tanaman.  Fungsi utama  dari  asam  absisat  adalah mengurangi  kecepatan  pembelahan  dan pemanjangan  di  titik  tumbuh  dan mempertahankan dormansi biji (Pujiasmanto, 2020). Pada Hormone  message  concept
(Ruiz  Rosquete et  al. ,  2012)  dijelaskan bahwa  auksin  diproduksi  pada  bagian pucuk  tanaman  dan  ditranslokasikan secara basipetal ke perakaran yang akan mempengaruhi perkembangan, morfologi  dan  fungsi  akar.    Auksin  yang ditranslokasikan juga akan
mempengaruhi  produksi  dan  aktivitas sitokinin  di  perakaran.  Perkembangan perakaran  yang  baik  akan  memicu produksi  sitokinin  yang  kemudian  akan ditranslokasikan  secara  akropetal  ke bagian tajuk.
Aktivitas  hormon  pertumbuhan juga  berperan  dalam  proses  sambung pucuk tanaman terutama pada pertautan antar  sel  dari  jaringan  pada  batang bawah  dan  batang  atas  di  lokasi penyambungannya.    Terdapat  beberapa hipotesa  mekanisme  pengaruh  batang bawah  terhadap  pertumbuhan  tanaman hasil  sambung  yaitu  keterlibatan nutrisi, lingkungan  tumbuh,  perpindahan  air dalam jaringan tanaman, jaringan tautan dan  perubahan  konsentrasi  hormon (Keller et  al. ,  2012).  Transport  signal basipetal  IAA  (auksin  endogen)  sangat penting  dalam  hal  induksi  pertumbuhan batang atas oleh batang bawah  (Li et al. , 2012).  Penurunan  aktivitas  transport basipetal  auksin  ke  perakaran  akan menyebabkan turunnya produksi
sitokinin  dan  giberelin  di  akar  dan menyebabkan terjadinya  penghambatan perkembangan  perakaran.  Akibatnya, terjadi  penurunan  transport  akropetal sitokinin  ke  bagian  pucuk  tanaman sehingga  berpengaruh  negatif  terhadap pertumbuhan  dan  perkembangan  tajuk. Pada  proses  sambung  pucuk  dilakukan pemotongan  tajuk  tanaman  penyedia batang  bawah  yang  mengakibatkan
proses  transport  hormon  terganggu, terutama  pada  tahap  awal  pertumbuhan tanaman  hasil  sambung  (Goldschmidt, 2014).
Pada  tanaman  normal,    sitokinin dan  auksin  berada  dalam  kondisi seimbang. Proses penyambungan tanaman menyebabkan ketidakseimbangan  sitokinin  dan  auksin sehingga  diperlukan  penambahan  suatu zat  pemicu  pertumbuhan  yang  dapat meningkatkan  vigoritas  batang  bawah dan  batang  atas  (Karlidag  &  Esitken, 2012).  Kajian  peran  hormon  dalam interaksi  batang  bawah  dan  batang  atas dapat dimanfatkan untuk penyempurnaan  teknik  penyambungan tanaman  (Aloni et  al. ,  2010),  salah satunya  adalah  dengan  meningkatkan suplai  sitokinin  dan  menurunkan  suplai auksin  pada  pucuk  tanaman  penyedia batang  bawah  atau  sebaliknya  sehingga perkembangan  tanaman  hasil  sambung pucuk bisa berlangsung lebih cepat.
Teknik  sambung  pucuk  banyak dilakukan oleh petani kakao (Limbongan &  Selatan,  2014)  karena  dinilai  mudah, murah  dan  tidak  membutuhkan  sarana dan  peralatan  khusus.  Keberhasilan sambung  pucuk  kakao  bisa      mencapai lebih dari  90%  (Ariani et al. , 2018) dan bahkan bisa mencapai 100% (Safri et al. , 2018).  Meskipun  demikian,  teknik  ini membutuhkan  durasi  waktu  yang  cukup panjang  mulai  dari  penyiapan  batang
bawah  (penyemaian  biji)  hingga  benih siap tanam di lapang yang membutuhkan waktu  8  sampai  12  bulan.    Berdasarkan pengamatan  di  nurseri,  tanaman  kakao untuk  sumber  batang  bawah  minimal berumur  2  bulan  dari  sejak  disemaikan, tetapi  batang  bawah  yang  paling  baik dilaporkan  berumur  4 – 6  bulan (Rahardjo et  al. ,  2016).    Bibit  hasil sambung  dapat  dipindah  ke  lapang setelah berumur 2 – 3  bulan dari proses penyambungan  (Nappu et  al. ,  2015).
Dengan demikian,
pengaplikasian hormon  tanaman  dapat  dikaji  lebih  jauh sebagai  agen  yang  dapat  mempercepat proses  pertautan  pada  sambung  pucuk tanaman  kakao  sehingga  waktu  untuk penyiapan  bibit  menjadi  lebih  singkat. Tujuan  dari  penelitian  ini    adalah  untuk mengetahui  pengaruh  hormon  golongan sitonikin,  auksin  dan  giberelin  terhadap pembentukan  tunas  pada  batang  atas dalam sambung pucuk bibit kakao.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  dilakukan  di  Sub- Stasiun  Penelitian  Kakao  Sidenreng Rappang  Sulawesi  Selatan  pada  bulan Oktober  2016  sampai  Mei  2017.  Batang bawah  diperoleh  dari  persemaian  biji kakao  klon  M-45  yang  ditransplating ke polibag.  Batang  atas  merupakan  entres dari klon S-1 yang diperoleh dari kebun entres tersertifikasi. Teknik
penyambungan  menggunakan metode  V dengan  batang  atas  terdiri  dari  2 – 3 mata tunas berukuran ±10 cm (Ariani et
al. , 2018), kemudian seluruh batang atas disungkup dengan plastik sampai daerah penyambungan dan dilakukan
pengikatan  pada  daerah  sambungan dengan  tali  plastik  lentur.  Bibit  hasil sambung  dipelihara  di  bawah  naungan paranet  50%.  Sungkup  plastik  dilepas pada 2 minggu setelah sambung (MSS).
Metode  statistik  yang  digunakan adalah  rancangan  acak  kelompok. Sebagai  perlakuan  pada  percobaan pertama  adalah  12  taraf  kombinasi  zat pengatur  tumbuh  tanaman  (ZPT) golongan  sitokinin  dan  giberelin.  Pada percobaan  kedua  adalah  12  taraf kombinasi  ZPT  golongan  sitokinin  dan auksin.  Satu  teknik  konvensional  tanpa aplikasi  ZPT  digunakan  sebagai  kontrol (Tabel 1). Pada masing-masing perlakuan  digunakan  3  kelompok ulangan  dengan  5  tanaman  per perlakuan. Entres  disemprot  dengan  50  mL ZPT sesuai kombinasi perlakuan
menggunakan  handsprayer  bervolume 500  mL  hingga  basah  kecuali  entres perlakuan kontrol yang hanya disemprot menggunakan  air.  Selanjutnya  entres dibungkus  dengan  kertas  koran  dan dibiarkan  selama  ±  24  jam  sebelum digunakan  sebagai  batang  atas  dalam penyambungan. Tanaman hasil sambung
disiram  setiap  hari,  disiangi  dan  diberi pupuk  serta  disemprot  fungisida  jika terdapat serangan cendawan.
Pengamatan  dilakukan  terhadap persentase  keberhasilan penyambungan dan  indikator  pertumbuhan  vegetatif. Jumlah tunas, jumlah daun baru, panjang tunas  baru,  dan  jumlah  cabang  pada batang  atas  diamati  sejak  2  MSS  dan pengamatan  dilakukan  setiap  2  minggu sekali hingga tanaman berumur 3 bulan.
Pengambilan sampel untuk pengamatan  anatomi  jaringan  bidang sambungan  dilakukan  pada  8  minggu setelah  penyambungan  dengan  metode pengirisan  segar.  Metode  pengirisan segar  dilakukan  dengan  mengiris jaringan  dengan microtome ,  dengan ketebalan 20 – 25 µm (Handayani et al. , 2013).  Pengamatan  anatomi  jaringan dilakukan di bawah mikroskop Olympus BX51  yang  dilengkapi  kamera  digital mikroskop, dengan pembesaran 4x.
Tabel  1.  Komponen  hormon  penyusun masing-masing perlakuan
No  Perlakuan
Komponen  Penyusun (ppm) Sitokinin  Giberelin  Auksin Percobaan 1 1 A1 200 0 - 2 B1 200 100 - 3 C1 200 200 - 4 D1 400 0 - 5 E1 400 100 - 6 F1 400 200 - 7 G1 600 0 - 8 H1 600 100 - 9 I1 600 200 - 10 J1 800 0 - 11 K1 800 100 - 12 L1 800 200 -
AGROSCRIPT Vol. 2 No.2 (2020) Hal. 79-90
Percobaan 2 1 A2 200 - 0 2 B2 200 - 100 3 C2 200 - 200 4 D2 400 - 0 5 E2 400 - 100 6 F2 400 - 200 7 G2 600 - 0 8 H2 600 - 100 9 I2 600 - 200 10 J2 800 - 0 11 K2 800 - 100 12 L2 800 - 200 Konvensional 0 0 0

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Zat pengatur tumbuh yang
diaplikasikan pada entres sehari sebelum penyambungan  berdasarkan  hasil  sidik ragam  berpengaruh  nyata  terhadap proses  awal  pertautan  kedua  bagian tanaman  (Tabel  2).    Pertautan  yang terjadi  diindikasikan  dengan  munculnya tunas  pada  bagian  aksilar  batang  atas saat  2  MSS.  Dari  hasil  uji  lanjut  Duncan pada  taraf α =  0,05  dapat  diketahui bahwa  saat  2  MSS  jumlah  entres bertunas  lebih  tinggi    tanpa  adanya komponen  auksin  (Tabel  3)  dan  juga lebih  tinggi  tanpa  adanya  komponen  GA (Tabel 4).
Tabel 2. Rekapitulasi sidik ragam persentase pembentukan tunas pada batang atas Persentase tunas  (MSS) 2 4 6 8 Percobaan 1 ** ** tn * Percobaan 2 ** tn tn tn Keterangan : tn (tidak nyata), * (nyata), ** (sangat nyata)  pada selang kepercayaan 95% Jika  mengacu  pada hormone message concept , auksin
yang
ditambahkan  (100  dan  200  ppm)  tidak berpengaruh  pada  masa  awal  pertautan karena  proses  komunikasi  hormon antara  batang  atas  dan  batang  bawah terhambat  akibat  adanya  perlukaan (Aloni et al. , 2010). Selain itu, pada 2 MSS dimungkinkan sel-sel kalus yang terbentuk sebagai  pelekat antara batang bawah  dan  batang  atas  masih  sangat sedikit  sehingga  proses  transport  polar auksin  secara  basipetal  dari  pucuk  ke perakaran  belum  berlangsung  dengan sempurna.  Adanya  celah  antara  kedua sumber  batang  juga  akan  menyebabkan energi  yang  dibutuhkan  untuk  transport auksin  menjadi  lebih  besar.    Transport polar  auksin  membutuhkan  energi  ATP dan  pompa-pompa  proton  (Hohm et  al. , 2014),  serta  berproses  dari  sel  ke  sel dimana  auksin  keluar  melalui  membran plasma, berdifusi
menyebrangi komponen  lamela  tengah  dan  memasuki membran  plasma  sel  berikutnya.  Belum sempurnanya  pertautan  antara  batang bawah  dan  batang  atas  menyebabkan proses  translokasi  auksin  dari  sel  ke  sel ini menjadi tidak maksimal.
Jika  dibandingkan  dengan  cara konvensional  tanpa  pemberian  ZPT
(kontrol), aplikasi hanya hormon sitokinin  menyebabkan  keberhasilan sambung  pucuk  menjadi  lebih  tinggi dengan  persentase  pembentukan  tunas baru  mencapai  86.6%,  80%,  40%,  dan 40%  (Percobaan  1)  dan  93.4%,  40%,
53.4%,  dan  86.6%  (Percobaan  2) berturut-turut  pada  konsentasi  sitokinin 200,  400,  600,  dan  800  ppm,  sedangkan cara  konvensional  belum  menyebabkan induksi  pembentukan  tunas  (percobaan 1)  atau  hanya  6.6  %  pada  percobaan  2 (Tabel 3 dan 4).
Tabel  3.    Pengaruh  kombinasi  sitokinin  dan
giberelin terhadap rata-rata persentase  pembentukan  tunas pada 2 MSS Perlakuan (dalam ppm) Pembentukan tunas (%) Kontrol (tanpa ZPT) 0 d Sitokinin 200 + Giberelin 0 86.6 a Sitokinin 200 + Giberelin 100  20.0 cd Sitokinin 200 + Giberelin 200  26.6 cd Sitokinin 400 + Giberelin 0 80.0 ab Sitokinin 400 + Giberelin 100  60.0 abc Sitokinin 400 + Giberelin 200  26.6 cd Sitokinin 600 + Giberelin 0 40.0 bcd Sitokinin 600 + Giberelin 100  40.0 bcd Sitokinin 600 + Giberelin 200  40.0 bcd Sitokinin 800 + Giberelin 0 40.0 bcd Sitokinin 800 + Giberelin 100  20.0 cd Sitokinin 800 + Giberelin 200  33.4 cd
Keterangan  :  Nilai  rataan  yang  diikuti  oleh  huruf yang  sama  pada  kolom  yang  sama  tidak  berbeda nyata berdasarkan uji Duncan  pada taraf α = 0,05.
Hasil  yang  diperoleh  ini  sejalan dengan hasil penelitian yang menunjukkan bahwa pencelupan
permukaan  pemotongan  batang  bawah dan  batang  atas  pada  larutan  kombinasi hormon kinetin (250 atau 500 ppm)  dan BA  (250  atau  500  ppm)  akan menstimulasi  percepatan  pembentukan kalus  antara  batang  bawah  dan  batang atas  tanaman  anggur  ( Vitis  vinifera ) hingga  mencapai  100%  (Köse  & Güleryüz,  2006).  Kinetin  dan  BA diketahui  merupakan  golongan  sitokinin
yang  potensial  diaplikasikan  untuk meningkatkan  keberhasilan  penyatuan batang  atas  dan  batang  bawah  dalam proses  sambung  pucuk (Zengİnbal  &
Eșİtken, 2016) .
Tabel 4.    Pengaruh kombinasi sitokinin dan auksin terhadap rata-rata persentase pembentukan tunas pada 2 MSS Perlakuan (dalam ppm) Pembentukan tunas (%) Kontrol (tanpa ZPT) 6.6 d Sitokinin 200 + Auksin 0 93.4 a Sitokinin 200 + Auksin 100  6.6 de Sitokinin 200 + Auksin 200  0 e Sitokinin 400 + Auksin 0 40.0 cd Sitokinin 400 + Auksin 100  20.0 cde Sitokinin 400 + Auksin 200  13.4 de Sitokinin 600 + Auksin 0 53.4 bc Sitokinin 600 + Auksin 100  26.6 cde Sitokinin 600 + Auksin 200  6.6 de Sitokinin 800 + Auksin 0 86.6 ab Sitokinin 800 + Auksin 100  20.0 cde Sitokinin 800 + Auksin 200  6.6 de
Keterangan  :  Nilai  rataan  yang  diikuti  oleh  huruf yang  sama  pada  kolom  yang  sama  tidak  berbeda nyata berdasarkan uji Duncan  pada taraf α = 0,05.
Semakin tinggi konsentrasi
giberelin  dan  auksin  yang  diaplikasikan, menyebabkan  persentase  pembentukan tunas  pada  batang  atas  juga  semakin menurun (Gambar 1 dan 2). Rasio auksin dan  sitokinin  merupakan  faktor  yang mempengaruhi pertumbuhan tunas baru pada  batang  atas  (Müller  &  Leyser, 2011).  Pada  tanaman  apel  aplikasi  BA secara  eksogen  diketahui  juga  akan meningkatkan  jumlah  tunas  baru  pada tanaman apel yang batangnya mengalami dominansi  apikal  (Tworkoski  &  Miller, 2007).  Hasil  penelitian  ini  juga  sesuai dengan  penelitian  yang  menyatakan bahwa crosstalk antara  sitokinin  dan
AGROSCRIPT Vol. 2 No.2 (2020) Hal. 79-90
auksin tampak mengontrol vigor pertumbuhan  batang  atas,  dimana sitokinin berkontribusi terhadap
pertumbuhan  yang  positif  sedangkan auksin    terhadap  pertumbuhan  yang negatif (Koepke & Dhingra, 2013).
Hasil analisis mikroskopik jaringan sambung  ketika  sambungan  berumur  8 MSS  menunjukkan  adanya  perbedaan warna  dan  jaringan  nekrotik  berwarna coklat di zona  tersebut (Gambar 4). Hal ini  ditemukan  juga  pada  hasil  studi anatomi penyambungan
tanaman
Anacardium occidentale L, 30 hari setelah penyambungan  yang  ditandai  dengan adanya lapisan nekrotik dan pembesaran sel-sel  kalus  diantara  batang  bawah  dan batang  atas  (Mahunu et  al. ,  2012).
Jaringan  nekrotik  seiring  waktu  akan menghilang  yang  diperkirakan  terjadi pada hari ke-60 setelah terjadi pertautan jaringan  pembuluh  batang  atas  dan batang bawah dengan sempurna (Sholikah & Ashari, 2017). Analisis mikroskopik pada sayatan segar  juga  menunjukkan  adanya  kontak sambungan yang tampak jelas dan sudah tidak ditemukan adanya rongga diantara jaringan
kedua bagian tanaman.
Fenomena  ini  juga  ditemukan  pada sambung  mikro  tanaman  manggis ( Garcinia  mangostana )  dimana  terjadi kontak sambungan antara batang bawah dan  batang  atas  yang  diawali  dengan pembentukan  kalus  di  salah  satu  sisi
daerah  sambungan  dan  tautannya semakin  jelas  ketika  tanaman  berumur 10  dan  16  minggu  (Handayani et  al. , 2013).
Teknologi penyambungan tanaman berkembang cukup pesat dengan tingkat keberhasilan yang cukup tinggi. Meskipun  demikian,  masih  terdapat beberapa  kendala  yang  dihadapi  oleh para  praktisi  maupun  peneliti  yang masih membuka ruang untuk penyempurnaan. Tanaman hasil sambung diketahui dapat bertahan hidup hingga berproduksi akan tetapi interaksi batang  bawah  dan  batang  atas  masih sulit  diprediksi  (Goldschmidt,  2014), begitu  juga  halnya  dalam  aplikasi  ZPT pada  penyambungan  tanaman  kakao. Hasil  analisis  aplikasi  ZPT  pada penelitian  ini    masih  menunjukkan pengaruh  yang  belum  stabil  terhadap percepatan  pertautan  dan  pertumbuhan tanaman  hasil  sambung  yang  dapat dilihat  dari  data  pertumbuhan  tanaman hasil sambung dalam percobaan 1 dan 2.
Gambar  1.  Persentase  jumlah  tunas  baru  pada percobaan 1 saat 2, 4, dan 8 MSS
Berdasarkan pengamatan pertumbuhan vegetatif dari 4 MSS hingga akhir pengamatan (12 MSS) jumlah daun baru  pada  batang  atas,  jumlah  cabang yang terbentuk serta panjang tunas baru pada  2 – 12    MSS  tidak  berbeda  nyata antar  perlakuan  (Tabel  5).  Dengan demikian  zat  pengatur  tumbuh  yang diaplikasikan  pada  kajian  ini  diketahui lebih  berperan  sebagai  zat  yang menginduksi  pembentukan  tunas  baru pada batang atas, tetapi tidak
berpengaruh  terhadap  perpanjangan
tunas,  pertambahan  jumlah  daun  dan juga cabang.
Gambar  2.  Persentase  jumlah  tunas  baru  pada percobaan 2 saat 2 MSS.
Diperkirakan pada 12 MSS jaringan pembuluh pada tanaman sudah berfungsi sebagai  jalur  transportasi  auksin  secara basipetal  dari  pucuk  ke  perakaran  baik auksin  endogen  maupun  eksogen. Jaringan  pembuluh  ini  juga  sudah memiliki  fungsi  yang  sempurna  sebagai alat transport unsur hara dari tanah dan hasil fotosintat. Hal ini dapat dilihat pada pertumbuhan  vegetatif  batang  atas  yang
ditunjukkan  dari  rata-rata  jumlah  daun, jumlah  cabang  dan  panjang  tunas  baru pada percobaan 1 (Tabel 6)  dan pada 2 (Tabel 7).
Gambar  3.    Analisis  mikroskopik  jaringan sambung  dengan  perlakuan  aplikasi ZPT varian  A1 (A) dan D1 (B)  pada 8 MSS menggunakan mikroskop Olympus BX51 dengan perbesaran 4x.
Keterangan : ZP (Zona Penyatuan Sel), BB (Batang Bawah),  BA  (Batang  Atas),  EA  (Empelur  Batang Atas), EB (Empelur Batang Bawah)
Tabel  5.    Rekapitulasi  sidik  ragam  jumlah daun,                    panjang  tunas  dan jumlah cabang 4 MSS  8 MSS 12 MSS Percobaan 1 Jumlah daun tn tn tn Panjang tunas   - tn tn Jumlah cabang - - tn Percobaan 2 Jumlah daun tn tn tn Panjang tunas   - tn tn Jumlah cabang - - tn Keterangan :  tn (tidak berbeda nyata)
Gambar  4.    Analisis  mikroskopik  jaringan sambung  dengan  perlakuan  aplikasi hormon  varian    A2  (A)  dan  D2  (B)
pada 8 MSS menggunakan mikroskop Olympus  BX51  dengan  perbesaran 4x.
Keterangan  :  ZP  (Zona  Penyatuan  Sel),  EA  ( Empelur Batang Atas), EB (Empelur Batang Bawah), Panah menunjukan jaringan yang mengalami nekrotik. Tabel  6.    Pertumbuhan  vegetatif  tanaman hasil     sambung percobaan 1 pada 12 MSS No  Perlaku an Variabel pertumbuhan vegetatif (rata-rata) Jumlah daun Jumlah cabang Panjang tunas (cm) 1 Kontrol 6.50 2.50 11.00 2 A1 8.83 2.41 12.92 3 B1 7.50 2.00 11.94 4 C1 7.67 1.67 14.33 5 D1 10.83 2.67 15.75 6 E1 8.92 2.33 15.08 7 F1 11.50 2.25 17.50 8 G1 6.50 1.78 17.83 9 H1 12.84 2.83 20.50 10  I1 13.22 3.11 15.22 11  J1 10.84 2.33 16.50 12  K1 9.11 2.33 13.50 13  L1 13.50 3.25 15.00
Keberhasilan  pertautan  antara batang bawah dan batang atas diindikasikan  jika  pembuluh  xylem  dan phloem  dari  kedua  bagian  tanaman sudah  menyatu  dan  dapat  difungsikan sebagai alat angkut unsur hara dari tanah dan  fotosintat  (Handayani et  al. ,  2013).
Pembentukan tunas pucuk pada  cabang baru  juga  secara  langsung  berhubungan dengan produksi dan transportasi auksin pada keseluruhan tanaman. Tunas pucuk merupakan  tempat  sintesis  auksin endogen, yang dapat ditranslokasikan ke bagian  perakaran  yang  kemudian  akan menginduksi perkembangan akar. Sistem perakaran  yang  berkembang  baik  akan menjadi  tempat  produksi  sitokinin endogen,  selanjutnya  ditranslokasikan secara  akropetal  ke  pucuk  tanaman. Sitokinin  pada  pucuk  tanaman  akan mendorong perkembangan tajuk.
Tabel  7.  Pertumbuhan  vegetatif  tanaman hasil    sambung  percobaan  2  pada 12 MSS No Varian Hormon Variabel pertumbuhan vegetatif (rata-rata) Jumlah daun Jumlah cabang Panjang tunas (cm) 1 Kontrol 7.00 2.50 10.75 2 A2 10.88 3.09 9.54 3 B2 10.17 2.50 14.42 4 C2 8.42 1.93 13.33 5 D2 15.58 2.94 13.22 6 E2 8.27 1.77 11.52 7 F2 12.20 2.63 14.48 8 G2 9.80 2.17 15.22 9 H2 8.06 1.67 12.99 10 I2 11.92 2.78 10.31 11 J2 11.91 2.56 16.17 12 K2 7.72 1.50 14.43 13 L2 5.56 1.48 12.73
AGROSCRIPT Vol. 2 No.2 (2020) Hal. 79-90
Keberhasilan sambung pucuk
kakao  akan  menyebabkan  sintesis  dan transportasi  hormon-hormon  tersebut menjadi lebih efektif dan efisien sehingga akan  menyebabkan  bibit  kakao  yang dihasilkan  memiliki  karakteristik  yang diharapkan dengan
pertumbuhan optimal.

## SIMPULAN
Berdasarkan  hasil  analisis  data dapat  disimpulkan  bahwa  perlakuan penyemprotan  ZPT  pada  entres  sehari sebelum  penyambungan  berpengaruh terhadap persentase pembentukan tunas baru  pada  batang  atas  tetapi  tidak berpangaruh  terhadap  pertambahan jumlah daun, jumlah cabang dan panjang tunas  baru.  Aplikasi  ZPT  golongan sitokinin    menghasilkan  persentase pembentukan  tunas  baru  yang  lebih tinggi  dibandingkan  aplikasi  kombinasi ZPT golongan sitokinin  dengan golongan auksin  maupun  golongan  giberelin. Dengan  demikian,  sitokinin  dengan konsentrasi  200  ppm  direkomendasikan untuk  diaplikasikan  dalam  proses sambung pucuk kakao karena menyebabkan tingkat keberhasilan penyambungan yang paling tinggi.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Penulis  mengucapkan    terimakasih kepada  Bapak  Mursalin  dari  Dinas
Pertanian Kabupaten Sidenreng Rappang Sulawesi Selatan atas bantuannya  dalam pelaksanaan penelitian di  lapangan.  Kegiatan  ini  didanai  oleh program  DIPA  Pusat  Teknologi  Produksi Pertanian BPPT yang berjudul “Pengembangan  Teknologi  Produksi Kakao  dalam  Rangka  MP3EI  Koridor  IV
(Sulawesi Selatan) ”.
DAFTAR PUSTAKA Advinda, L. (2018). Dasar – dasar fisiologi tumbuhan . Deepublish. Aloni, B., Cohen, R., Karni, L., Aktas, H., & Edelstein,  M.  (2010).  Hormonal signaling in rootstock – scion interactions. Scientia Horticulturae , 127 (2), 119 – 126. https://doi.org/10.1016/j.scienta. 2010.09.003 Ariani,  S.  B.,  Sembiring,  D.  S.  P.  S.,  & Sihaloho, N. K. (2018). Keberhasilan  pertautan  sambung pucuk  pada  kakao  (theobroma cacao l) dengan waktu penyambungan dan panjang entres berbeda. JURNAL AGROTEKNOSAINS , 1 (2),  Article  2.
https://doi.org/10.36764/ja.v1i2.3 4
Asra,  R.,  Samarlina,  R.  A.,  &  Silalahi,  M.
(2020). Hormon  tumbuhan (I. Jatmoko, Ed.). UKI Press. http://repository.uki.ac.id/1579/ Brumos, J., Robles, L. M., Yun, J., Vu, T. C., Jackson,  S.,  Alonso,  J.  M.,  & Stepanova,  A.  N.  (2018).  Local auxin  biosynthesis  is  a  key regulator  of  plant  development. Developmental  Cell , 47 (3),  306-
318.e5.
https://doi.org/10.1016/j.devcel.2 018.09.022
Goldschmidt, E. E. (2014). Plant grafting:
New  mechanisms,  evolutionary implications. Frontiers  in  Plant Science , 5 . https://doi.org/10.3389/fpls.2014 .00727 Handayani,  R.  S.,  Poerwanto,  R.,  Sobir,
Purwito,  A.,  &  Ermayanti,  T.  M. (2013).  Pengaruh  batang  bawah dan jenis tunas pada mikrografting manggis  ( Garcinia  mangostana ) secara  In  Vitro. Jurnal  Agronomi
Indonesia  (Indonesian  Journal  of Agronomy) , 41 (1),  Article  1. https://doi.org/10.24831/jai.v41i 1.7076
Hohm,  T.,  Demarsy,  E.,  Quan,  C., Allenbach  Petrolati,  L.,  Preuten,  T., Vernoux,  T.,  Bergmann,  S.,  &
Fankhauser,  C.  (2014).  Plasma membrane  H+-ATPase  regulation is  required  for  auxin  gradient formation  preceding  phototropic growth. Molecular Systems Biology , 10 (9), 751. https://doi.org/10.15252/msb.20 145247 Karlidag, H., & Esitken, A. (2012). Effects of  grafting  height  of  MM106 rootstock  on  growth,  lateral  shoot formation  and  yield  in  apple  trees. The  Journal  of  Horticultural  Science and  Biotechnology , 87 (5),  409 – 412. https://doi.org/10.1080/14620316.
2012.11512886
Keller,  M.,  Mills,  L.  J.,  &  Harbertson,  J.  F. (2012).  Rootstock  effects  on  deficit- irrigated  winegrapes  in  a  dry climate:  vigor,  yield  formation,  and fruit  ripening. American  Journal  of
Enology  and  Viticulture , 63 (1),  29 – 39. https://doi.org/10.5344/ajev.2011. 11078 Koepke,  T.,  &  Dhingra,  A.  (2013). Rootstock scion somatogenetic interactions  in  perennial  composite plants. Plant  Cell  Reports , 32 (9),
1321 – 1337. https://doi.org/10.1007/s00299- 013-1471-9
Köse, C., & Güleryüz, M. (2006). Effects of auxins and cytokinins on graft union of  grapevine  ( Vitis  vinifera ). New Zealand  Journal  of  Crop  and Horticultural  Science , 34 (2),  145 –
150.
https://doi.org/10.1080/01140671. 2006.9514399
Li, H. L., Zhang, H., Yu, C., Ma, L., Wang, Y., Zhang,  X.  Z.,  &  Han,  Z.  H.  (2012). Possible roles of auxin and zeatin for initiating  the  dwarfing  effect  of  M9 used  as  apple  rootstock  or interstock. Acta Physiologiae Plantarum , 34 (1), 235 – 244. https://doi.org/10.1007/s11738- 011-0822-9
Limbongan,  J.,  &  Selatan,  B.  S.  (2014). Pengembangan  teknologi  sambung pucuk  sebagai  alternatif  pilihan perbanyakan bibit kakao. 2541-0822 . https://doi.org/10.21082/jp3.v32n
4.2013.p166-172
Mahunu, J. K., Adjei, P. Y., & Asante, A. K.
(2012). Anatomical  studies  on  graft formation  in  cashew  (Anacardium occidentale L. ) . http://udsspace.uds.edu.gh:80/hand le/123456789/918
Müller,  D.,  &  Leyser,  O.  (2011).  Auxin, cytokinin  and  the  control  of  shoot branching. Annals of Botany , 107 (7),
1203 – 1212. https://doi.org/10.1093/aob/mcr0 69
Nappu, M. B., Limbongan, J., & Lologau, B. A.  (2015).  Perbanyakan  bibit  kakao melalui  teknik  grafting,  okulasi,  dan somatik  embriogenesis  di  provinsi sulawesi  selatan. Jurnal  Pengkajian Dan Pengembangan Teknologi Pertanian , 17 (3), Article 3. https://doi.org/10.21082/jpptp.v17 n3.2014.p%p
Pujiasmanto,  B.  (2020). Peran  dan manfaat  hormon  tumbuhan:  contoh kasus paclobutrazol untuk penyimpanan  benih .  Yayasan  Kita Menulis. Rahardjo, M., Djauhariya, E., Darwati, I., & Smd,  R.  (2016).  Pengaruh  umur batang bawah terhadap pertumbuhan benih mengkudu tanpa  biji  hasil  grafting. Buletin Penelitian  Tanaman  Rempah  Dan Obat , 24 (1), 14 – 18. https://doi.org/10.21082/bullittro.v 24n1.2013.%p Ruiz  Rosquete,  M.,  Barbez,  E.,  &  Kleine- Vehn,  J.  (2012).  Cellular  auxin homeostasis: gatekeeping is housekeeping. Molecular Plant , 5 (4),
772 – 786. https://doi.org/10.1093/mp/ssr10 9
Safri,  S.,  Yunarti,  Y.,  Rahim,  I.,  & Suherman,  S.  (2018).  Penggunaan klon  entres  sambung  pucuk  dengan lama  perendaman  air  kelapa  muda terhadap  persentase  dan  tinggi tanaman  kakao  ( Theobroma  cacao L.). JURNAL  GALUNG  TROPIKA , 7 (2), 139 – 145. https://doi.org/10.31850/jgt.v7i2.3 64
Schaller,  G.  E.,  Bishopp,  A.,  &  Kieber,  J.  J. (2015).  The  yin-yang  of  hormones: cytokinin  and  auxin  interactions  in plant  development. The  Plant  Cell ,
27 (1),
44 – 63. https://doi.org/10.1105/tpc.114.13
3595
Sholikah,  A.,  &  Ashari,  S.  (2017).
Pengaruh  saat  defoliasi  batang  atas terhadap pertumbuhan dan keberhasilan  grafting  durian  ( Durio
zibethinus Murr.). Jurnal  Produksi
Tanaman , 5 (3), Article 3. https://doi.org/10.21176/protan.v5 i3.398
Sinay, H. (2018). Pengaruh giberelin dan temperatur  terhadap  pertumbuhan semai  gandaria  ( Bouea  macrophylla Griffith.). BIOSCIENTIAE , 8 (1), Article 1. http://ppjp.ulm.ac.id/journals/inde x.php/bioscientiae/article/view/18 6 Tworkoski,  T.,  &  Miller,  S.  (2007). Endogenous hormone concentrations and bud-break response  to  exogenous  benzyl adenine in shoots of apple trees with two  growth  habits  grown  on  three rootstocks. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology , 82 (6), 960 – 966. https://doi.org/10.1080/14620316.
2007.11512333
Zengİnbal,  H.,  &  Eșİtken,  A.  (2016). Effects  of  the  application  of  various substances and grafting methods on the  grafting  success  and  growth  of black  mulberry  (Morus  nigra  L.). Acta  Scientiarum  Polonorum  - Hortorum Cultus , 15 (4), 99 – 109