* Penulis untuk korespondensi. e-mail: hpssp.henny@gmail.com ISSN 2085-2916  e-ISSN 2337-3652 Tersedia daring http://jai.ipb.ac.id J. Agron. Indonesia, Agustus 2019, 47(2):188-195 DOI: https://dx.doi.org/10.24831/jai.v47i2.19445 Pemberian Rizobakteri dan Coumarin pada Pertumbuhan dan Pembentukan Umbi Tanaman Kentang ( Solanum tuberosum L.)
Rhizobacteria and Coumarin Applications on Growth and Tuber Formation of Potato (Solanum tuberosum L.)
Henny Puspita Sari 1* , WarnitaWarnita 2 , dan Indra Dwipa 3
1 Program Studi S2 Agronomi, Fakultas Pertanian, Universitas Andalas 2 Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Andalas Kampus Unand Limau Manis Kec. Pauh, Kota Padang 25163, Sumatera Barat, Indonesia
Diterima 24 Mei 2018/Disetujui 20 Mei 2019

## ABSTRACT
Increasing the productivity of potato crops will require the availability of tubers that are of high quality and resistant to disease. Giving isolates rhizobacteria and coumarin is expected to increase the growth and formation of potato tubers. The  purpose  of  this  study  was  to  obtain  the  best  types  of  rhizobacteria  and  coumarin  concentrations  in  increasing  the productivity of potato plants. The research was conducted in the experimental garden of the Center for Technology Transfer and Agricultural Zone Development of Andalas University, Alahan Panjang, Solok Regency, West Sumatra, from October 2016 to January 2017. The study used a 2-factor complete randomized design with three replications. The first factor was rhizobacterial isolates, namely without bacteria, BT.4.1 isolates, BT.4.2 isolates, BT.4.3 isolates. The second factor was the concentration of coumarin growth inhibitors, namely 0, 50, 100, and 150 mg L -1 . The characters observed were morphological characterization rhizobacteria, leaf area, relative growth rate, growth rate potato tubers at 1-month-old, fresh weight of tubers aged 100 days after planting, tuber classes, namely: large, medium and small. Observation data were analyzed by the F test, followed by the HSD test at 5% level. The results showed that BT.4.1 and BT.4.2 rhizobacteria with coumarin 100 mg L -1 and 150 mg L -1 increased the growth of potato plants, while the results of potato plants were more affected by the application of BT.4.1 and BT rhizobacteria.
Keywords: Granola, leaf area, growth rate potato tuber, tuber, relative growth rate

## ABSTRAK
Peningkatan produktivitas tanaman kentang, akan membutuhkan ketersedian umbi yang berkualitas dan tahan terhadap penyakit.  Pemberian  isolat  rizobakteria  dan  coumarin  diharapkan  dapat  meningkatkan  pertumbuhan  dan  pembentukan umbi tanaman kentang. Tujuan penelitian ini untuk mendapatkan jenis rizobakteria dan konsentrasi coumarin yang terbaik dalam peningkatan produktivitas tanaman kentang. Penelitian dilaksanakan di kebun percobaan Pusat Alih Teknologi dan Pengembangan Kawasan Pertanian Universitas Andalas, Alahan Panjang, Kabupaten Solok, Sumatera Barat, pada bulan Oktober 2016 sampai dengan Januari 2017. Penelitian menggunakan rancangan acak lengkap 2 faktor dengan 3 ulangan. Faktor pertama adalah isolat rizobakteri yaitu tanpa bakteri, isolat BT.4.1, isolat BT.4.2, isolat BT.4.3. Faktor kedua adalah konsentrasi zat penghambat tumbuh coumarin yaitu 0, 50, 100, dan 150 mg L -1 . Karakter yang di amati adalah karakterisasi morfologi rhizobakteri, luas daun, laju pertumbuhan relatif, laju tumbuh umbi tanaman kentang pada umur satu bulan, bobot segar umbi per tanaman umur 100 HST, kelas umbi yaitu: large, medium dan small. Data hasil pengamatan dianalisis dengan uji F, dilanjutkan dengan uji BNJ pada taraf 5%. Hasil penelitian menunjukkan bahwa rizobakteri BT.4.1 dan BT.4.2 dengan coumarin 100 mg L -1 dan 150 mg L -1 dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman kentang, sedangan untuk hasil tanaman kentang lebih dipengruhi pada pemberian rizobakteri BT.4.1 dan BT.4.3.
Kata kunci: Granola, luas daun, laju tumbuh umbi, umbi, laju pertumbuhan relatif

## PENDAHULUAN
Kentang merupakan sumber karbohidrat yang memiliki potensi  sebagai  penunjang  program  diversifikasi  pangan di Indonesia, hal ini dapat dilihat dari tingginya konsumsi kentang pada tahun 2015 sebesar 2,294 kg per kapita per tahun (PUSTADIN, 2015). FAO, (2014) melaporkan bahwa konsumsi kentang menempati urutan ke lima di dunia setelah padi, gandum, kedelai dan jagung, sedangkan di benua Asia konsumsi  kentang  menempati  urutan  ke  tiga  setelah  padi dan gandum.
Produktivitas  kentang  di  Indonesia  secara  nasional masih rendah, yaitu: pada tahun 2016 berkisar 18.23 ton ha -1 , khususnya  Sumatera  Barat  berkisar 19.49 ton ha -1 (Badan Pusat Statistik, 2017), sedangkan produktivitas kentang di negara lain yaitu: Australia 39.69 ton ha -1 , Amerika 47.15 ton ha -1 , Jepang 30.65 ton ha -1 dan Laos 30.04 ton ha -1 (FAO, 2015). Kendala  utama  dalam  peningkatan  produktivitas tanaman kentang adalah ketersediaan bibit yang berkualitas secara  kontinu  serta  bebas  dari  organisme  pengganggu tanaman. Tanaman kentang yang dibudidayakan umumnya memiliki  ketahanan  yang  rendah  terhadap  berbagai penyakit  terutama  penyakit  layu  bakteri.    Solusi  terbaik untuk  mereduksi  penyakit  pada  tanaman  kentang  adalah menginduksi dengan rizhobakteri sehingga tanaman menjadi tahan terhadap penyakit.
Rizobakteri  hidup  pada  daerah  rizosfer  atau  daerah perakaran, berperan sebagai pemacu pertumbuhan tanaman dan sebagai agens biokontrol terhadap penyakit, sehingga mampu meningkatkan hasil tanaman (Elango et al ., 2013; Rodrigo et al. , 2013). Selain penggunaan rizobakteri untuk meningkatkan  pertumbuhan  dan  perlindungan  tanaman dari  patogen,  serta  pembentukan  umbi  pada  tanaman kentang  dapat  diperoleh  dari  aplikasi  pengatur  tumbuh dengan  pemberian coumarin. Efek  bakteri yang  diberikan juga  memicu  keterlibatan  coumarin  dalam  merespon pertumbuhan  tanaman,  pembentukan  kembali  mikroba dalam  tanah  dan  melindungi  tanaman  dari  jamur  patogen (Derek et al. , 2018; Li et al ., 2011). Coumarin merupakan produk alami tanaman yang berasal dari jalur fenilpropanoid ditemukan menumpuk di jaringan akar, yang memiliki peran penting dalam biokimia dan fisiologi tanaman (Kai et al ., 2006), sebagai antioksidan dan inhibitor enzim (Chattha et al., 2016). Tujuan  penelitian ini  untuk  mendapatkan jenis rizobakteria dan konsentrasi coumarin yang terbaik dalam peningkatan produktivitas tanaman kentang.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  dilaksanakan  di  kebun  percobaan  Pusat Alih  Teknologi  dan  Pengembangan  Kawasan  Pertanian Universitas  Andalas,  Alahan  Panjang,  Kabupaten  Solok, Sumatera  Barat,  pada  ketinggian  tempat  1,616  m  dpl. Kisaran  curah  hujan  selama  penelitian  rata-rata  505  mm dengan rata-rata 15 hari hujan.
Percobaan  menggunakan  rancangan  acak  lengkap (RAL)  dengan  2  faktor  dan  3  ulangan.  Faktor  pertama adalah 4 isolat bakteri (Tanpa bakteri isolat, BT.4.1, BT.4.2,
BT.4.3) dan faktor kedua adalah 4 konsentrasi coumarin (0, 50, 100,150 mg L -1 ). Setiap kombinasi dilakukan dengan 3 kali  ulangan,  sehingga  didapatkan  48  unit  percobaan  dan masing-masing  unit  terdiri  dari  10  tanaman  dengan  total 480 populasi tanaman.
Media tanam yang digunakan adalah campuran tanah dan  pupuk  kandang  (20  ton  ha -1 )  dengan  perbandingan  2 :  1  (disterilkan  terlebih  dahulu)  dan  dimasukkan  kedalam polibag ukuran 5 kg. Suspensi isolat rizobakteri (Tabel 1) dengan kepadatan inokulum 10 8 di aplikasikan sebanyak dua kali yaitu saat sebelum penanaman, dan pada umur 28 HST (Hari Setelah Tanam) sebanyak 10 mL dengan cara disiram di  tanah  sekitar  perakaran  tanaman  kentang.  Perlakuan konsentrasi coumarin dilakukan dengan cara disemprotkan pada seluruh bagian tajuk tanaman (50 mL per tanaman) pada umur 28, 35, 42 HST. Benih kentang yang digunakan adalah varietas granola (G 0 ) yang berasal dari Dieng Banjarnegara, Jawa Tengah. Benih G 0 yang digunakan untuk merbanyak benih tanaman kentang yang bermutu.
Pengamatan  karakterisasi  morfologi  rhizobakteri meliputi: bentuk koloni, elevasi koloni, tepi koloni, ukuran, warna, uji gram untuk mengetahui apakah bakteri bersifat gram  positif  (Resistensi  terhadap  alkali  (1%  KOH)  larut) atau  negatif  (Resistensi  terhadap  alkali  (1%  KOH)  lebih pekat)  dan  uji  hipersensitif  dengan  cara  menyuntikan suspensi  rizobakteri  indigenus  secara  interseluler  pada jaringan permukaan bawah daun tanaman Mirabillis Jalapa dan  mengamati  perkembangan  gejala  selama  2  x  24  jam (Yanti, et al ., 2013).
Pengamatan  pertumbuhan  tanaman  meliputi  luas daun yang diukur menggunakan Leaf Area Meter® Weiber Model No ACM – 52301j, laju pertumbuhan relatif (RGR) menggunakan  rumus  yang  dikemukakan  oleh  Gardner et al ., (1991): (RGR) = lnW 2 − ln W 1 /t 2 − t 1 (g per tanaman per hari), laju tumbuh umbi (LTU) menggunakan rumus yang dikemukakan oleh Syarif (2004): LTU = W 2 umbi − W 1 umbi /t 2 − t 1 × 1/S (g per tanaman per hari). lnW 1 lnW 2 merupakan logaritma  natural  dari  bobot  kering  total  tanaman  pada waktu t 1 dan t 2 , W 1 dan W 2 umbi merupakan bobot kering umbi pada waktu t 1 dan t 2 , t 1 merupakan waktu pengamatan tertentu,  dan  t 2 merupakan  waktu  pengamatan  sesudah  t 1 , S  merupakan sampel. Pengukuran dilakukan pada sampel destruktif pada umur 35, 42, 49, 56, dan 63 HST, diambil sebanyak 1 sampel per 7 hari.
Pengamatan  hasil  meliputi  bobot  segar  umbi  per tanaman (g) yang diamati saat panen (umur 100 HST). Kelas umbi yaitu: Large (L)/besar : > 20 g, Medium (M)/sedang 5-20  g  dan Small (S)/kecil  <  5  g  (Direktorat  Perbenihan Hortikultura,  2014).  Data  hasil  pengamatan  dianalisis dengan uji F, dilanjutkan dengan uji BNJ pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Karakter Rizobakteri
Hasil analisis sifat morfologi dari 3 isolat rizobakteri yang  di  ambil  dari  perakaran  tanaman  kentang  memiliki bentuk,  warna,  elevasi  yang  seragam,  sedangkan  ukuran koloni beragam. Rizobakteri bersifat gram negatif, sedangkan
uji reaksi hipersensitif menunjukkan reaksi positif dengan menunjukan gejala kematian sel, kekeringan dan nekrosis pada  area  daun  yang  disuntikan  dengan  suspensi  bakteri (Tabel 1).

## Pertumbuhan Tanaman
Pemberian  rizobakteri  dan  coumarin  meningkatkan pertumbuhan tanaman kentang, dibandingkan dengan tanpa rizobakteri. Pertumbuhan vegetatif tanaman kentang nyata lebih  baik  (Tabel  2,  3,  dan  4).  Luas  daun  pada  tanaman kentang  meningkat  setelah  diintroduksi  dengan  isolat rizobakteri dan coumarin pada interaksi BT.4.1 dan coumarin 100 mg L -1 dan BT.4.2 dan coumarin 150 mg L -1 dibanding tanpa isolat rizobakteri dan coumarin 150 mg L -1 . Laju  pertumbuhan  relatif  meningkat  pada  tanaman yang  diintroduksi  dengan  isolat  rizobakteri  BT.4.2.  dan coumarin  150  mg  L -1 (0.14  g  per  tanaman  per  hari).  Laju tumbuh  umbi  meningkat  pada  tanaman  yang  diintroduksi dengan isolat rizobakteri BT.4.2 dan coumarin 150 mg L -1. Dalam hal ini terlihat bahwa isolat rizobakteri dan coumarin mampu meningkatkan pertumbuhan tanaman.
Peningkatan luas daun, laju pertumbuhan relatif dan laju  tumbuh  umbi  tanaman  kentang  pada  umur  63  HST, diduga karena rizobakteri dapat meningkatkan ketersediaan unsur  hara  dalam  tanah  terutama  N,  P  dan  memiliki kemampuan  untuk  menghasilkan  hormon  IAA  dalam tanah. Ketersediaan nutrisi pada media tumbuh pada awal penanaman, berpengaruh terhadap eksudat yang dikeluarkan akar tanaman, sehingga dapat dimanfaatkan oleh rizobakteri untuk sumber nutrisi. Bakteri Bacillus sp. mengkolonisasi perakaran tanaman dan membantu penyerapan unsur hara,
pengembangan  akar  dan  pengambilan  serta  metabolisme nitrogen (Li et al ., 2011; Fifi et al. , 2018). Beberapa hasil penelitian menjelaskan bahwa bakteri Bacillus  (Zakry et  al .,  2012),  dan  Pseudomonas  telah diidentifikasi  sebagai  PGPR  ke  tanaman  jagung  melalui fiksasi nitrogen biologis (BNF), pelarut fosfat dan produksi fitohormon. BNF oleh PGPR berkontribusi hingga 12-70% dari total serapan N (Piromyou et al ., 2011), memperbaiki N rata-rata 20 kg ha -1 per tahun (Jnawali et al ., 2015), dan mengandung fosfat masing - masing sekitar 1-50% dan 0.1- 0.5% dari total populasi yang di aplikasikan (Souza et al ., 2015).  Identifikasi  101  isolat  milik  genera Burkholderia, Cedecea,  Cronobacter,  Enterobacter,  Pantoea dan Pseudomonas yang  mampu  melarutkan trikalsium  fosfat [Ca 3 (PO 4 ) 2 ]  (Souza et  al .,  2013),  serta  menghasilkan fitohormon IAA murni pada Bacillus sp . sebesar 141 ppm (Fifi et al ., 2018). Ahemada dan Kibret (2014) menjelaskan, bahwa 80% isolat rizobakteri memiliki kemampuan untuk mensintesis dan melepaskan auksin sebagai metabolit sekunder. Secara umum,  IAA  disekresi  oleh  pengaruh  rizobakteri  dengan berbagai  proses  perkembangan  tanaman,  karena  hormon IAA endogen pada tanaman dapat dirubah oleh akuisisi IAA yang telah disekresikan oleh bakteri (Glick, 2012). Senyawa coumarin berinteraksi dengan jalur sinyal IAA pada tanaman petunia hybrida , dalam mempengaruhi metabolisme IAA, sehingga mempengaruhi konsentrasi IAA di dalam tanaman (Lupini et al ., 2010; Cheynier et al ., 2013).
Meningkatnya  konsentrasi  IAA  di  dalam  tanaman menyebabkan  penurunan  pada  konsentrasi  GA,  dan terjadinya perubahan struktur pada anatomis daun menjadi lebih tebal, sehingga aktivitas fotosintesis meningkat (Kefeli
Isolat bakteri Konsentrasi Coumarin (mg L -1 ) 0 50 100 150 Tanpa 386.83Aa 1,466.67Ab 424.00Aa 1,196.83ABab BT.4.1 488.89Aa 527.33Aa 2,896.67Bb 759.86Aa BT.4.2 532.00Aa 915.57Aa 593.78Aa 1,927.00Bb BT.4.3 1,182.86Aa 858.67Aa 1,230.14Aa 601.33Aa
Tabel 1. Karakterisasi bentuk morfologi dan fisiologi isolat rizobakteri dari perakaran tanaman kentang
Isolat bakteri
Konsentrasi Coumarin (mg L -1 ) 0 50 100 150 Tanpa 386.83Aa 1,466.67Ab 424.00Aa 1,196.83ABab BT.4.1 488.89Aa 527.33Aa 2,896.67Bb 759.86Aa BT.4.2 532.00Aa 915.57Aa 593.78Aa 1,927.00Bb BT.4.3 1,182.86Aa 858.67Aa 1,230.14Aa 601.33Aa
Tabel 2.  Luas daun (cm 2 ) tanaman kentang umur 63 HST pada pemberian isolat Rizobakteri dan konsentrasi coumarin
Keterangan: *Angka-angka pada arah horizontal yang diikuti huruf kecil yang sama dan angka-angka pada arah vertikal yang diikuti oleh huruf besar yang sama berbeda tidak nyata berdasarkan uji BNJ taraf 5%. ** Data yang disajikan adalah data asli, untuk sidik ragam dan BNJ adalah data transformasi √𝑋𝑋 + 0.5
et  al., 2003),  dan  pembelahan  sel  di  stolon  dihubungkan dengan  penurunan  kadar  GA  (Navarre  dan  Pavek , 2014). Retardan  (alar)  mampu  merangsang  pengumbian  dengan jalan menghambat biosintesis giberelin yang berperan dalam pertumbuhan tanaman, karena inisiasi umbi membutuhkan giberelin yang rendah (Warnita, 2008).

## Hasil Tanaman Kentang
Isolat  rizobakteri  yang  diintroduksi  pada  benih  dan tanaman  kentang  mampu  meningkatkan  hasil  tanaman, yaitu:    BT.4.1  (89.12  g)  dan  BT.4.3  (84.56  g)  (Tabel  5). Hasil tanaman kentang yang terendah pada introduksi isolat BT.4.2  (51.57  g),  sedangkan  pada  pemberian  coumarin tidak berpengaruh nyata pada pembentukan umbi, rata-rata pemberian coumarin 0-150 mg L -1 adalah 73-75 g. Peningkatan bobot segar umbi tanaman kentang pada isolat rizobakteri BT.4.1 dan BT.4.3 dapat dilihat dari nilai luas daun yang terjadi pada dua isolat tersebut. Luas daun memberikan kontribusi positif pada pertumbuhan tanaman, memungkinkan  tanaman  mampu  menggunakan  semua cahaya  yang  mengenainya.  Fotosintat  hasil  fotosintesis tersebut di translokasikan ke umbi. Menurut Tri et al. (2018) fotosintat  yang  dihasilkan  digunakan  untuk  pembentukan umbi,  karena  proses  umbi  terkait  erat  dengan  aktivitas pertumbuhan  tanaman  bagian  atas,  sehingga  laju  tumbuh
umbi  meningkat  (Gambar  1),  hal  ini  berbanding  terbalik pada  isolat  rizobakteri  BT.4.2.  Meningkatnya  luas  daun pada  pada  isolat  rizobakteri  BT.4.2,  digunakan  untuk pertumbuhan  bagian  atas  tanaman,  dan  berakibat  pada tingginya peningkatan laju tumbuh relatif, sehingga bobot segar umbi yang dihasilkan lebih rendah.
Peningkatan  bobot  umbi  segar  juga  memicu pembentukan  umbi  berdasarkan  klasifikasi/kelompok umbi. Berdasarkan klasifikasi/kelompok umbi (Tabel 6, 7, dan 8), pada pemberian isolat rizobakteri dengan coumarin menunjukan  bahwa  umbi  yang  dihasilkan  pada  penelitian ini  berukuran  besar  (Gambar  2).  Umbi  berukuran Small (S  /kecil  <  5  g  yang  tertinggi  pada  kontrol  (tanpa  isolat rizobakteri dan tanpa coumarin), klasifikasi umbi Large (L)/ besar > 20 g yang terbaik dihasilkan oleh isolat rizobakteri BT.4.3, berbeda tindak nyata dengan BT.4.1 dan tanpa isolat rizobakteri,  sedangkan  klasifikasi  umbi Medium (M)  atau sedang 5-20 g tidak berbeda nyata.
Interaksi isolat rizobakteri dan konsentrasi coumarin menghasilkan  bobot  umbi  yang  lebih  besar  (Gambar  2), sehingga jumlah umbi berdasarkan klasifikasi umbi small (S),  lebih  sedikit  jika  dibandingkan  dengan  tanpa  isolat rizobakteri dan tanpa coumarin. Hal ini merupakan dampak positif dari rhizobakteria dan coumarin, dimana rizobakteri bertindak dalam pembelahan sel di stolon dan konsentrasi coumarin bertindak sebagai pembentukan umbi. Niro et al.
Isolat bakteri Konsentrasi Coumarin (mg L -1 ) 0 50 100 150 Tanpa 0.05aA 0.06aA 0.03aA 0.08aAB BT.4.1 0.06aA 0.09aA 0.13aA 0.09aAB BT.4.2 0.06abA 0.02aA 0.05abA 0.14bB BT.4.3 0.05aA 0.06aA 0.08aA 0.02aA Tabel  3.  Laju  pertumbuhan  relatif  (g  per  tanaman  per  hari)  tanaman  kentang  umur  56-63  HST  pada  pemberian  isolat Rizobakteri dan konsentrasi coumarin
Keterangan: *Angka-angka pada arah horizontal yang diikuti huruf kecil yang sama dan angka-angka pada arah vertikal yang diikuti oleh huruf besar yang sama berbeda tidak nyata berdasarkan uji BNJ taraf 5%. ** Data yang disajikan adalah data asli, untuk sidik ragam dan BNJ adalah data transformasi √𝑋𝑋 + 0.5
Isolat bakteri Konsentrasi coumarin (mg L -1 ) 0 50 100 150 Tanpa 0.68aA 1.83aA 3.24aA 3.82aA BT.4.1 0.86aA 3.17aA 3.01aA 1.44aA BT.4.2 1.95aA 0.80aA 0.77aA 9.08bB BT.4.3 2.56aA 2.69aA 3.39aA 0.84Aa Tabel 4. Laju tumbuh umbi (g per tanaman per hari) tanaman kentang umur 56-63 HST pada pemberian isolat Rizobakteri dan konsentrasi coumarin
Keterangan: *Angka-angka pada arah horizontal yang diikuti huruf kecil yang sama dan angka-angka pada arah vertikal yang diikuti oleh huruf besar yang sama berbeda tidak nyata berdasarkan uji BNJ taraf 5%. ** Data yang disajikan adalah data asli, untuk sidik ragam dan BNJ adalah data transformasi √𝑋𝑋 + 1
Isolat bakteri Konsentrasi Coumarin (mg L -1 ) Rata-rata 0 50 100 150 Tanpa 67.77 54.08 92.71 82.04 74.15AB BT.4.1 79.17 89.77 82.13 105.38 89.12B BT.4.2 58.70 52.32 53.11 42.16 51.57A BT.4.3 97.44 98.99 71.95 69.85 84.56B Rata-rata 75.77 73.79 74.97 74.86
Tabel  5.  Bobot  segar  umbi  per  tanaman  (g)  kentang  umur  100  HST  pada  pemberian  isolat  Rizobakteri  dan  konsentrasi coumarin
Keterangan: *Angka-angka  pada  arah  vertikal  yang  diikuti huruf kecil yang sama berbeda tidak nyata berdasarkan uji BNJ taraf 5%. ** Data yang disajikan adalah data asli, untuk sidik ragam dan BNJ adalah data transformasi
0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5 35-42 HST42-49 HST49-56 HST56-63 HST LT U (g p er ta na man p er h ar i) Tanpa BT.4.1 BT.4.2 BT.4.3 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5 4 35-42 HST42-49 HST49-56 HST56-63 HST LT U (g p er ta na man p er h ar i) Tanpa 50 100 150 B (mg L -1 ) 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5 35-42 HST42-49 HST49-56 HST56-63 HST LT U (g p er ta na man p er h ar i) Tanpa BT.4.1 BT.4.2 BT.4.3 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5 4 35-42 HST42-49 HST49-56 HST56-63 HST LT U (g p er ta na man p er h ar i) Tanpa 50 100 150 B (mg L -1 )
Gambar 1. Rata-rata laju tumbuh umbi tanaman kentang umur 35 HST-63 HST akibat pemberian (A) isolat Rizobakteri dan (B) konsentrasi coumarin (mg L -1 )
√𝑋𝑋 + 0.5
Isolat bakteri
Jumlah umbi (< 5 g)
0
50 mg L -1 100 mg L -1 150 mg L -1 Tanpa 7.00bB 2.00aA 1.33aA 1.00aA BT.4.1 1.33aA 1.67aA 1.00aA 1.00aA BT.4.2 1.67aA 0.67aA 1.00aA 1.67aA BT.4.3 1.67aA 3.33aA 2.33aA 4.33aA Tabel 6. Jumlah umbi berdasarkan kelas umbi small (S)/kecil < 5 g umur 100 HST pada pemberian isolat rizobakteri dan konsentrasi coumarin (mg L -1 )
Keterangan: *Angka-angka pada arah horizontal yang diikuti huruf kecil yang sama dan angka-angka pada arah vertikal yang diikuti oleh huruf besar yang sama berbeda tidak nyata berdasarkan uji BNJ taraf 5%. ** Data yang disajikan adalah data asli, untuk sidik ragam dan BNJ adalah data transformasi √𝑋𝑋 + 1
Isolat bakteri Jumlah umbi (5-20 g) Rata-rata 0 50 mg L -1 100 mg L -1 150 mg L -1 Tanpa 11.00 9.00 15.00 8.00 10.75 BT.4.1 10.00 12.67 6.67 13.00 10.58 BT.4.2 12.67 14.00 12.67 15.33 13.67 BT.4.3 20.33 10.33 10.00 14.00 13.67 Rata-rata 13.50 11.50 11.08 12.58 KK = 16.66 % Tabel 7. Jumlah umbi berdasarkan kelas umbi Medium (M)/sedang 5-20 g umur 100 HST pada pemberian isolat rizobakteri dan konsentrasi coumarin (mg L -1 )
Keterangan: *Angka-angka pada baris dan kolom yang sama berbeda tidak nyata menurut uji F pada taraf nyata 5%. **Data yang disajikan adalah data asli, untuk sidik ragam dan BNJ adalah data transformasi √𝑋𝑋 + 1
Tanpa Isolat bakteri dan 0 Coumarin (mg L -1 ) Tanpa Isolat bakteri dan 50 Coumarin (mg L -1 ) Tanpa Isolat bakteri dan 100 Coumarin (mg L -1 ) Tanpa Isolat bakteri dan 150 Coumarin (mg L -1 )
BT.4.1 dan 0 Coumarin (mg L -1 ) BT.4.1 dan 50 Coumarin (mg L -1 )
BT.4.1 dan 100 Coumarin (mg L -1 ) BT.4.1 dan 150 Coumarin (mg L -1 )
BT.4.2 dan 0 Coumarin (mg L -1 ) BT.4.2 dan 50 Coumarin (mg L -1 )
BT.4.2 dan 100 Coumarin (mg L -1 ) BT.4.2 dan 150 Coumarin (mg L -1 )
BT.4.1 dan 50 Coumarin (mg L -1 ) BT.4.1 dan 100 Coumarin (mg L -1 ) BT.4.1 dan 150 Coumarin (mg L -1 )
Gambar 2. Umbi kentang Granola setelah panen pada umur 100 HST
Isolat bakteri Jumlah umbi (> 20 g) Rata-rata 0 50 mg L -1 100 mg L -1 150 mg L -1 Tanpa 2.33 3.00 5.00 3.67 3.50AB BT.4.1 4.00 4.33 5.67 6.67 5.17AB BT.4.2 3.00 3.33 2.67 2.33 2.83A BT.4.3 5.33 6.67 7.33 3.33 5.67B Rata-rata 3.67 4.33 5.17 4.00
Tabel 8. Jumlah umbi berdasarkan kelas umbi Large (L)/besar > 20 g umur 100 HST pada pemberian isolat Rizobakteri dan konsentrasi coumarin (mg L -1 )
Keterangan: *Angka-angka  pada  arah  vertikal  yang  diikuti  huruf  kecil  yang sama  berbeda tidak nyata berdasarkan uji BNJ taraf 5%. **Data yang disajikan adalah data asli, untuk sidik ragam dan BNJ adalah data transformasi . √𝑋𝑋 + 1
(2016)  menjelaskan,  bahwa  eksudat  akar  mempengaruhi ketersediaan  coumarin  dan  efektivitas  mikroorganisme, dimana pengaruh rhizobakteria tersebut berkorelasi positif dan  negatif,  sehingga  memiliki  respon  yang  berbeda
terhadap  hasil  tanaman,  hal  ini  juga  dipengaruhi  oleh ketersediaan unsur hara pada media tanam yang digunakan saat penanaman (Tabel 9).

## KESIMPULAN
Interaksi  rizobakteri  dan  coumarin  mampu meningkatkan  luas  daun  pada  tanaman  kentang  pada pemberian  rizobakteri  BT.4.1  dengan  coumarin 100 mg L -1 dan BT.4.2 dengan coumarin 150 mg L -1 , laju pertumbuhan  relatif  meningkat  pada  tanaman  kentang pada  pemberian  rizobakteri  BT.4.2.  dengan  coumarin 150  mg  L -1 ,  Laju  tumbuh  umbi  meningkat  pada  tanaman kentang pada pemberian rizobakteri BT.4.2 dengan coumarin 150  mg  L -1 ,  sedangan  untuk  hasil  tanaman  kentang  lebih dipengaruhi pada pemberian rizobakteri BT.4.1 dan BT.4.3.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Tim  Peneliti  berterimakasih  kepada  DIPA  UNAND yang telah membantu mendanai pelaksanaan penelitian ini sesuai surat perjanjian pelaksanaan Penegasan Hibah Klater Riset  Guru  Besar Tahun Anggaran  2016  No.  524/XIV/A/ UNAND.

## DAFTAR PUSTAKA
Ahemad, M.,  M. Kibret. 2014. Mechanisms and applications of  plant  growth  promoting  rhizobacteria:  current perspective. King Saud Uni-Sci. 26:1-20.
Pusat Statistik Indonesia. 2017. Luas panen, Produksi dan produktivitas Kentang. Statistik Indonesia. Sumber: Badan  Pusat  Statistik  dan  Direktorat  Jenderal Hortikultura, Jakarta, ID.
Antonio, L., F. Araniti, F. Sunseri, M.R Abenavoli. 2014. Coumarin  interacts  with  auxin  polar  transport  to modify  root  system  architecture  in Arabidopsis thaliana . Plant Growth Regul. 74:23-31 Chattha, F.A., M. Nisa, M.A. Munawer, S. Kousar. 2016.
Coumarin-based  heteroaromatics  as  plant  growth regulators. Publ. Intech. 7:92-105.
Cheynier, V., G. Comte, K.M. Davies. 2013. Plant phenolics: Recent advances on their biosynthesis, genetics, and ecophysiology. Plant Physiol. Biochem. 72:1-20.
Derek S.L., P.J.P.L. Teixeirab. 2018. Root-exuded coumarin shapes  the  root  microbiome.  Proceedings  of  the National Academy of Sciences of the United States of America 115:5629-5631.
Direktorat  Perbenihan  Hortikultura.  2014.  Teknis Perbanyakan dan Sertifikasi Benih Kentang. Jakarta. Kementerian Pertanian.
Elango.  R.,  R.  Parthasarathi.,  S.  Megala.  2013.  Elango. R.,  R.  Parthasarathi,  S.  Megala.  2013.  Field  level studies on the association of plant growth promoting rhizobacteria  (PGPR)  in Gloriosa  superba L. rhizosphere. Indian Streams Res. 3:1-6.
[FAO]  Food  and  Agriculture  Organization  of  the  United Nations.  2014.  Statistical  Pocketbook  World  food and Agriculture. Rome, IT.
[FAO]  Food  and  Agriculture  Organization  of  the  United Nations.  2015.  Statistical  Pocketbook  World  food and Agriculture. Rome, IT.
Fifi, P., S.I.  Saputra, J. Merini. 2018. Uji beberapa konsentrasi bakteri Bacillus sp.  endofit  untuk  meningkatkan pertumbuhan bibit kakao ( Theobroma cacao L.). J. Agron. Indonesia 46:322-327.
Gardner,  F.P.,  R.B.  Pearce,  R.L.  Mitchel.  1991.  Fisiologi tanaman budidaya. Terjemahan. H. Susilo, Subiyanto ( Ed .). UI Press. Jakarta, ID.
Glick,  B.R.  2012.  Plant  Growth-Promoting  Bacteria:
Mechanisms  and Applications.  Hindawi  Publishing Corporation Scientifica.
Jenis Satuan Nilai Kriteria pH H 2 O (1:2) 4,186 Sangat masam N-Total % 0,352 Sedang C- Organik % 7,656 B- Organik % 13,199 Tinggi C/N % 21,751 P-tersedia ppm 49,993 Tinggi K-dd me 100 g -1 0,171 Rendah Al-dd me 100 g -1 ttd - KTK me 100 g -1 36,322
Netral
Tabel 9. Hasil analisis awal kimia tanah di kebun percobaan Pusat Alih Teknologi dan Pengembangan Kawasan Pertanian Universitas Andalas (PATPKP UNAND), Alahan Panjang, Kabupaten Solok, Sumatera Barat
Sumber: Laboratorium Analisis Tanah Fakultas Pertanian Universitas Andalas Padang
Jnawali,  A.D.,  R.B.  Ojha,  S.  Marahatta.  2015.  Role  of azotobacter  in  soil  fertility  and  sustainability-A review. Adv. Plants Agric. Res. 2:250-253.
Kai, K., B. Shimizu, M. Mizutani, K. Watanabe, K. Sakata. 2006.  Accumulation  of  coumarins  in Arabidopsis thaliana . Phytochemistry. 67:379-386.
Kefeli, V., M. Kalevitch. 2003. Natural Growth Inhibitors and  Phytohormones  in  Plants  and  Enviroment. Springer. USA.
Li,  X.,  M.Y.  Gruber,  D.D.  Hegedus,  D.J.  Lydiate,  M.J. Gao.  2011.  Effects  of  a  coumarin  derivative,  4- methylumbelliferone,  on  seed  germination  and seedling  establishment  in Arabidopsis .  J.  Chem. Ecol. 37:880-90.
Lupini, A., A. Sorgonà, Anthony, J. Miller, M.R. Abenavoli. 2010. Short-term effects of coumarin along the maize primary  root  axis.  Plant  Signaling  Behav.  5:1395- 1400.
Navarre,  R.,  M.  Pavek.  2014.  The  Potato  Botany.  CAB International. US.
Niro, E., R. Marzaioli, S. Crescenzo, B. Abrosca, S. Castaldi, A.  Esposito,  A.  Fiorentino,  F.  Rutigliano.  2016. Effects  of  the  allelochemical  coumarin  on  plants and soil microbial community. Soil Biol. Biochem. 95:30-39.
Piromyou,  P,  B.  Buranabanya,  P. Tantasawat,  P. Tittabutr, N. Boonkerd, N. Teaumroong. 2011. Effect of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) inoculation on microbial community structure in rhizosphere of forage corn cultivated in Thailand. Europ. Soil Biol. 47:44-54.
[PUSTADIN] Pusat Data dan Sistem Informasi Pertanian. 2015.  Statistik  Konsumsi  Pangan.  Kementerian Pertanian. Jakarta.
Pusat Data dan Sistem Informasi Pertanian. 2015. Statistik Konsumsi Pangan. Kementerian  Pertanian. Jakarta.
Rodrigo,  M.,  P.  Garbeva,  J.M.  Raaijmakers.  2013.  The rhizosphere  microbiome:  significance  of  plant beneficial, plant pathogenic, and human pathogenic microorganisms.  FEMS  Microbiol.  Rev.  37:634- 663.
Souza,  R., A. Beneduzi, A. Ambrosini, P.B. Costa, J. Meyer, L.K. Vargas, R. Schoenfeld, L.M.P Passaglia. 2013. The  effect  of  plant  growth-promoting  rhizobacteria on the growth of rice ( Oryza sativa L.) cropped in southern Brazilian fields. Plant Soil 366:585-603.
Souza, R., A. Ambrosini, L. Passaglia. 2015. Plant growth- promoting bacteria as inoculants in agricultural soils. Genet. Molec. Biol. 38:401-419.
Syarif,  Z.  2004.  Pertumbuhan  dan  hasil  tanaman  kentang dengan  dan  tanpa  diikat  pada  turus  dalam  sistem tumpansari  kentang/jagung  di  dua  lokasi  dataran medium  berbeda  elevasi.  Disertasi.  Sekolah Pascasarjana. Universitas Padjajaran. Bandung.
Tri, I.O., Z. Syarif, Y. Yanti, Warnita. The growth and yield of potato ( Solanum tuberosum L.) with application of indigenous rhizobacteria and coumarin. Int. J. Agric. Innov. Res. 7:2319-1473.
Warnita.  2008.  Modifikasi  media  pengumbian  kentang dengan  beberapa  zat  penghambat  tumbuh.  Jerami 1:50-52.
Yanti, Y., T. Habazar, Z. Resti, D. Suhalita. 2013. Penapisan isolat  rizobakteri  dari  perakaran  tanaman  kedelai yang  sehat  untuk  pengendalian  penyakit  pustul bakteri  ( Xanthomonas  axonopodis  pv.  glycines). J. HPT Tropika 13:24-34.
Zakry, F.A.A., Z.H. Shamsuddin, K.A. Rahim, Z. Zakaria,
A.A. Rahim. 2012. Inoculation of Bacillus sphaericus UPMB-10  to  young  oil  palm  and  measurement  of its  uptake  of  fixed  nitrogen  using  the  15N  isotope dilution technique. Microbes Environ. 27:257-262.