Agro Estate , 5 (1) Juni 2021     ISSN : 2580-0957 (Cetak) ISSN : 2656-4815 (Online)
AGRO ESTATE
Jurnal Budidaya Perkebunan Kelapa Sawit dan Karet
Available online https: //ejurnal.stipap.ac.id/index.php/JAE
UJI BAKTERI ANTAGONIS UNTUK MENGENDALIKAN PENYAKIT MOULDY ROT ( Ceratocystis fimbriata ) DI LABORATORIUM

## TEST OF ANTAGONIST BACTERIAL TO CONTROL OF MOULDY ROT (Ceratocystis fimbriata) DISEASE IN THE LABORATORY
Cici Indriani Dalimunthe 1 , Radite Tistama 2 dan Elia Wike Wijayanti Wijaya 3 1,2 Balai Penelitian Sungei Putih, Galang, Deli Serdang, PO BOX 1415 Medan 20001 3 Universitas Pembangunan Panca Budi, Fakultas Pertanian, Jl. Jend. Gatot Subroto Km. 4,5, PO BOX 1099 Medan

## *Coresponding Email : cc_dalimunthe@yahoo.com

## Abstrak
Ceratocystis fimbriata  menyebabkan penyakit pada  bidang  sadap  tanaman  karet  (Hevea  brasiliensis),  yang menyebabkan jamur abu-abu atau busuk pada panel sadap yang mempengaruhi hasil lateks. Tujuan penelitian adalah  untuk  memperoleh  bakteri  antagonis  yang  dapat  menghambat  pertumbuhan  penyakit  mouldy  rot (Ceratocystis fimbriata) pada skala laboratorium. Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap non- faktorial yang terdiri dari sepuluh perlakuan dan tiga ulangan. Bakteri Antagonis yang digunakan adalah BA1, BA3, BA4, BA5, BA6, BA7, BA8, BA9, dan BA10. Isolat bakteri diambil dari hasil isolasi kulit yang dipulihkan dan kulit tanaman karet perawan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa isolat bakteri yang dapat menghambat pertumbuhan patogen sekitar > 80% adalah BA1, BA4, BA5, BA9, dan BA1. Isolat BA2, BA3, BA6, BA7, dan BA8  dapat  menghambat  pertumbuhan  patogen  jamur  sekitar  40%  hingga  <80%.  Isolat  BA10  memiliki persentase penghambatan tinggi sekitar 92,84%. Pengujian lebih lanjut perlu dilakukan pada skala lapangan untuk menentukan efektivitasnya sebagai kontrol biologis penyakit mouldy rot.
Kata kunci: Hevea brasiliensis, Bakteri antagonis, Ceratocystis fimbriata, eksplorasi .

## Abstract
Ceratocystis fimbriata causes diseases on the tapping panels of the rubber tree ( Hevea brasiliensis ), on which it causes grey mould or mouldy rot on tapping panels affecting latex yield. The research objective was to get antagonistic bacteria that can inhibit the Mouldy-rot disease ( Ceratocystis fimbriata ) on a laboratory scale. This  study  uses  a  completely  randomized  design  non-factorial  consisting  of  ten  treatments  and  three replications. Antagonist Bacterial used  is BA1,  BA3,  BA4, BA5, BA6,  BA7, BA8, BA9,  and  BA10. Bacterial isolates were taken from the results of isolation skin recovered and skin virgin rubber plants. Results of the study showed that the bacterial isolate that can inhibit the growth of pathogen about > 80% were BA1, BA4, BA5, BA9, and BA1. The isolates BA2, BA3, BA6, BA7, and BA8 can inhibit the growth of fungus pathogen about 40% to < 80%. The isolate of BA10 has a high percentage inhibition, approximately 92.84%. Further testing needs to be done on a field scale to determine its effectiveness as biological control of mouldy rot disease.
Keywords: Hevea brasiliensis, Bacterial antagonist, Ceratocystis fimbriata , exploration.
How  to  cite  : Dalimunthe,  C.I.,  Tistama,  R.,  &  Wijaya,  E.W.W.  (2021).  Uji  Bakteri Antagonis  Untuk  Mengendalikan  Penyakit  Mouldy  Rot  ( Ceratocystis fimbriata ) di Laboratorium. Jurnal Agro Estate Vol.5 (1) : 39-48.

## PENDAHULUAN
Salah  satu  penyebab  rendahnya produktivitas  dan  mutu  karet  disebabkan oleh serangan penyakit. Beberapa penyakit yang sering menyerang tanaman karet antara lain penyakit jamur akar putih (JAP),  penyakit  batang  kanker  garis, penyakit  gugur  daun,  penyakit  layu fusarium ,dan  jamur  upas  (Iskarlia et  al ., 2014).  Selain  itu,  penyakit  bidang  sadap juga  sering  menyerang  tanaman  karet yaitu kering alur sadap (KAS) dan Mouldy Rot.  KAS  merupakan  penyakit  non- patogenik.  Penyebab  KAS  adalah over exploitation yang  memicu  peningkatan senyawa  radikal  yang  menyebabkan koagulasi lateks di dalam pembuluh lateks dan pembentukan sel tilasoid (Andriyanto dan  Tistama,  2014).  Sedangkan Mouldy rot merupakan penyakit  yang disebabkan oleh  patogen Ceratocytis  fimbriata . Gejala  serangan Mouldy  rot mula-mula pada  kulit  pulihan  dekat  dengan  irisan sadapan terdapat bercak - bercak mengendap  pada  kulit.  Warna  bercak cepat  berubah  menjadi  hitam  dan  meluas sehingga  terjadi  jalur  berwarna  hitam sejajar  dengan  irisan  sadapan.  Jika  cuaca lembab  pada  jalur-jalur  yang  baru  dapat terbentuk  lapisan  kopang  seperti  beledu berwarna kelabu. Oleh karena itu penyakit ini  disebut Mouldy  rot atau  busuk berkapang.  Pada  serangan  yang  berat
jamur  masuk  sampai  ke  kambium  dan merusaknya,  menyebabkan  terjadinya luka  yang  tidak  dapat  pulih  kembali sehingga  bidang  sadapan  rusak  sama sekali (Sulistiani dan Muludi, 2018).
Penyakit Mouldy  rot merupakan penyakit yang serius pada bidang sadapan pada musim hujan dan pada daerah-daerah yang kelembabannya tinggi. Di Sumatera Utara,  penyakit  ini  menjadi  salah  satu penyakit penting. Perkebunan karet setiap tahun banyak menghadapi masalah penyakit  tersebut.  Serangan  penyakit umumnya terjadi pada bulan-bulan basah terutama September- Desember (Suwarto,1984).  Kebun  yang  rimbun  dan tidak  tertembus  matahari  pada  musim hujan  merupakan  kondisi  yang  optimum terhadap  perkembangan penyakit Mouldy rot (Soepena, 1983). Pengendalian penyakit Mouldy  rot dapat  dilakukan dengan  kultur  teknis,  kimia  dan  biolois. Pengendalian  secara  kultur  teknis  sudah diterapkan  dengan  cara  pembersihan gulma  dan  pemangkasan  tajuk  tanaman agar  cahaya  bisa  masuk  ke  gawangan sehingga  mengurangi  kelembaban  kebun yang cocok untuk perkembangan penyakit ini.  Pengendalian  secara  kimia  dengan menggunakan  fungisida  berbahan  aktif karbendanzim ,  namun  sekarang  sudah tidak dijual  lagi di pasaran.  Perlu adanya inovasi terkait pengendalian penyakit  ini,
yakni pengendalian biologi karena ramah lingkungan  dan  tidak  berdampak  pada kualitas lateks.
Pengendalian biologi sangat dianjurkan  karena  ramah  lingkungan. Sejumlah mikroorganisme seperti bakteri, yeast  dan  jamur  telah  banyak  digunakan untuk  pengendalian  biologis  patogen pasca panen dan mereka telah menunjukkan sifat –sifat yang baik untuk dapat  mengendalikan  jamur  patogen (Calvo et  al, 2003).  Pemanfaatan  bakteri antagonis  masih  memiliki  peluang  untuk diteliti  terkait  pengendalian  penyakit  ini. Beberapa  golongan  bakteri  antagonis seperti Pseudomonas mampu menghasilkan  senyawa volatile berupa amonia,  alkil  piron dan  hidrogen  sianida yang  dapat  meracuni  mikroba  lain, disamping itu Pseudomonas juga memproduksi sejumlah subtansi ekstraselular  seperti  enzim  kitinase, protoase  dan  antibiotik  yang  menekan pertumbuhan pesaingnya (Compant et al,
2005).  Tulisan  ini  membahas  mengenai hasil pengujian beberapa bakteri antagonis untuk mengendalikan penyakit Mouldy rot ( Ceratocystis fimbriata ) di Laboratorium.

## METODOLOGI

## Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  di Laboratorium  Proteksi  Balai  Penelitian
Sungei  Putih,  Kecamatan  Galang,  Deli Serdang pada bulan Maret - Agustus 2016.

## Bahan dan Alat
Bahan  dan  alat  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  adalah  media  PDA ( Potato  Dextrose  Agar ),  NA  ( Nutrient Agar ),  isolat  bakteri  bidang  sadap,  air steril,  aquades,  bahan  kimia  seperti alkohol  96%,  klorox  0,1%,  etanol, safranin,  methyl  blue,  kristal  violet, petridish (cawan  petri),  erlenmeyer, beaker glass , gelas ukur, labu ukur, mikro pipet,  preparat,  pelubang  gabus  ( cork borer ), jarum ose, bunsen, masker, sarung tangan, hand sprayer , korek api, mikroskop, Autoclave, LAF ( Laminar Air Flow ),  planimeter, hot  plate , shaker , kertas  label,  dan  bahan/alat  pendukung lainnya.

## Metode Penelitian
Metode  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  Rancangan  Acak Lengkap  (RAL)  non  faktorial  dengan  10 perlakuan dan 3 ulangan.
Perlakuan yang digunakan adalah: BA1 = Bakteri Antagonis 1 BA2 = Bakteri Antagonis 2 BA3 = Bakteri Antagonis 3 BA4 = Bakteri Antagonis 4 BA5 = Bakteri Antagonis 5 BA6 = Bakteri Antagonis 6 BA7 = Bakteri Antagonis 7 BA8 = Bakteri Antagonis 8
BA9 = Bakteri Antagonis 9 BA10 = Bakteri Antagonis 10
Metode analisis data yang digunakan  dalam  penelitian  ini  untuk menarik  kesimpulan  dalam  penelitian  ini adalah metode linier yang diasumsi untuk Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  non faktorial
Yijk = µ + Aj +Cij
Dimana :
Y ijk  =  Pengamatan  faktor  A  taraf  ke-i, faktor B taraf ke-j dan ulangan ke- k
Μ = Rataan umum
αi  =   Pengaruh  faktor  utama  pada  taraf ke-  i  Cij  =  Pengaruh  galat  1  pada faktor  utama  ke-i  dan  ulangan  k-j Cijk = pengaruh galat II pada faktor utama  taraf  ke-i,  ulangan  ke-j  dan faktor tambahan pada taraf ke –k. Pelaksanaan Penelitian Isolasi dan Pemurnian Jamur
( Ceratocystis fimbriata )
Inokulum  jamur  diambil  dari kebun  karet  yang  terserang  jamur Ceratocystis  fimbriata. Inokulum  yang diambil  berupa  kumpulan  konidia  jamur yang  tumbuh  dekat  dan  sejajar  dengan irisan  bidang  sadap  yang  baru  dibuka. Konidia  jamur  yang  tumbuh  dekat  dan sejajar  dengan  irisan  bidang  sadap  yang baru  dibuka.  Konidia  yang  diperoleh diinokulasikan langsung pada media PDA
di  dalam  petridish  menggunakan  jarum ose yang disterilkan dalam lampu bunsen. Inokulum  yang  diperoleh  dibawa  ke laboratorium proteksi Sungei Putih, untuk selanjutnya diinkubasikan dan dimurnikan sehingga  diperoleh  biakan  murni  dari jarum tersebut. Biakan murni hasil isolasi dari  suatu  kebun  disebut  sebagai  isolat kebun tersebut. Untuk memastikan bahwa jamur yang diperoleh hasil isolasi  benar– benar adalah jamur Ceratocystis fimbriata, maka  dilakukan  identifikasi morfologi dengan mikroskop.
Isolasi dan Pemurnian Bakteri

## Antagonis
Cara isolasi kulit pulihan dan kulit perawan  tanaman  karet  yaitu  potongan dibersihkan  dengan  clorox  dicelupkan dengan air steril lalu dicelupkan kedalam alkohol  95%  lalu  dicelupkan  kembali kedalam aquades steril kemudian dihancurkan  dengan  mortal  ditimbang sebanyak  1  gram  setelah  itu  dilakukan pengenceran dari 10 -1 sampai dengan 10 -9 sebanayak  0,1  ml  dengan  pipet  tetes setelah  itu  masukan  kedalam  petri  tanpa membuka petri seluruhnya dengan menyuntikan kedalam kemudian di ratakan,  kemudian  didalam  cawan  petri tersebut  dimasukan  agar  cair  yang  telah didinginkan  sampai  50˚C  sebanyak  kira kira  20  ml,  selama  penggunaan  medium, tutup  cawan  tidak  boleh  dibuka  terlalu
lebar untuk menghindari terjadi kontaminasi dari  luar. Setelah penuangan cawan petri segera digerakan secara hati– hati agar sel-sel mikroba menyebar secara merata.  Setelah  agar  memadat  cawan tersebut  dapat  di  inkubasi  didalam inkubator secara terbalik selama 1 -2 hari, setelah  2  hari  pilih  koloni  bakteri  yang terpisah  dikarekterisasi  kemudian  di murnikan dengan cara di gores secara zig- zag pada media lempeng agar.

## Perbanyakan Bakteri
Isolat  murni bakteri  diambil menggunakan  jarum  ose,  kemudian dimasukan  kedalam  media  NA  cair setelah itu di shake r selama 3-4 hari.

## Uji Bakteri Antagonis
Untuk  uji  Antagonis  dilakukan dengan  tehnik  peracunan  makanan  ( food poisoning ). Inokulum mouldy rot diambil dari  biakan murni dan ditumbuhkan pada media  PDA  yang  telah  dicampur  dengan bakteri  antagonis  dengan  dosis  7,5%. Inokulum  yang  berbentuk  bulat  dengan diameter  0,5  cm  diletakkan  pada  cawan petri.  Selanjutnya  perlakuan  di  simpan dalam inkubator dengan suhu kamar 28˚C.
Parameter Pengamatan

## Luas
Pertumbuhan Koloni (cm)
Pengukuran  luas  koloni  jamur dilakukan  pada  6  hari  setelah  inokulasi
(hsi).  Cara  pengukuran  adalah  sebagai berikut: Luas koloni jamur yang berkembang  pada  media  PDA  dipolakan pada  plastik  kaca  dengan  menggunakan spidol.  Kemudian  pola  tersebut  di  ukur dengan  planimeter.  Luasnya  identik dengan  luas  koloni  yang  dihasilkan  pada setiap  perlakuan.  Data  yang  diperoleh secara  statistik  sesuai  dengan  rancangan percobaan yang digunakan.
Persentase Hambatan
Persentase hambatan dapat di ukur dengan rumus sebagai berikut:
D 1 – D 2 PI =                      x 100%
D 1
Keterangan:
PI =   Persentase Hambatan (%)
D 1 =  Diameter  pertumbuhan  koloni patogen tanpa perlakuan (kontrol)
D 2 =  Diameter  pertumbuhan  koloni patogen ke arah menuju jamur/bakteri antagonis (perlakuan).
Baker et  al .,  (1986)  menyatakan bahwa bakteri terpilih jika persentase daya hambatnya di atas 80%.
Pengamatan
Bakteri secara

## Mikroskopis dan Makroskopis
Pengamatan  secara  mikroskopis yaitu dengan melihat jenis bakteri dengan menggunakan  mikroskop,  pengamatan secara makroskopis yaitu melihat
karekteristik  dari  hasil  eksplorasi  dari kulit tanaman karet seperti bentuk, warna, elevasi dan tepian.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil  pengamatan  6  hsi  (hari setelah  inokulasi)  menunjukkan  bahwa
tiga bakteri antagonis yang memiliki daya hambat  tertinggi  terdapat  pada  isolat bakteri  kode  BA10, BA9 dan BA4  yakni sebesar  92.89%,  92.09%  dan  90.67% (Tabel 1).
Tabel 1 Persentase Penghambatan bakteri antagonis terdapat Ceratocystic fimbriata Kode Isolat Persentase Penghambatan (%) BA1 82.80b BA2 71.24c BA3 65.26c 90.67a BA4 BA5 89.18a BA6 63.51d BA7 58.65e BA8 46.32f BA9 92.09a BA10 92.98a
Angka yang diikuti notasi huruf yang sama pada kolom yang sama menyatakan tidak berbeda nyata dengan Uji Jarak Berganda Duncan taraf  5%.
Hasil  pengamatan  menunjukan bahwa  setiap  isolat  bakteri  memiliki kemampuan  daya  hambat  yang  berbeda- beda. Banyak faktor yang  mempengaruhi hal  tersebut.  Baker  &  Cook  (1974) melaporkan  strain  bakteri  yang  berbeda akan  menghasilkan  senyawa  metabolit yang  berbeda  sehingga  pengaruh  yang  di timbulkan juga berbeda. Mukerji dan Grag (1988) juga melaporkan bahwa terjadinya perbedaan hasil persentase penghambatan juga  disebabkan  oleh  adanya  kebutuhan
nutrisi,  kemampuan  dalam  berkompetisi, antibiosis dan parasitisme terhadap patogen. Mikroba dapat menekan perkembangan  patogen  atau  penyakit dengan  mekanisme  kompetisi  terhadap nutrisi  atau  ruang  (bersaing  untuk mendapatkan  makanan  atau  tempat), antibiosis  (memproduksi  antibiosis)  dan paratisme  (berperan  sebagai  parasit). Schaad et  al., (2001)  mengemukakan bahwa  bakteri  antagonis  dapat  menekan cendawan  atau  bakteri  patogen  karena
bakteri antagonis tersebut dapat menghasilkan  senyawa  antibiotik,  yang dapat  menghambat  pertumbuhan  patogen pada tanaman.
Isolat bakteri BA4, BA9 dan BA10 menghasilkan  senyawa  yang  berfungsi sebagai  inhibitor  terhadap  suatu  enzim yang  dihasilkan  oleh  cendawan,  jika enzim tersebut berperan dalam metabolisme yang penting maka aktivitas enzimatis sel cendawan terganggu, akibatnya  akan  menekan  pertumbuhan cendawan.  Selanjutnya,  senyawa  yang dihasilkan  oleh  bakteri  tersebut  ada  yang mampu  menekan  sintesis  protein  pada cendawan. Sintesis protein yang terganggu menyebabkan cendawan kekurangan protein tertentu yang menyebabkan  pertumbuhan  cendawan terhambat (Purwantisari, 2005).
Senyawa antifungal yang dihasilkan  oleh  bakteri  secara  umum mengakibatkan  terjadinya  pertumbuhan yang  abnormal  pada  hifa  (malformasi), yang  ditunjukkan  dengan  pembengkakan dan pemendekan hifa yang mengakibatkan hifa tidak dapat berkembang dengan sempurna.
Disamping  itu  juga  ditemukan  hifa patogen  yang  mengalami  lisis,  hal  ini disebabkan  karena  bakteri  menghasilkan enzim kitinase yang dapat melisis dinding sel  patogen,  dinding  sel beberapa
cendawan  patogen  dilaporkan  disusun oleh senyawa kitin (Eliza et al 2007).
Hasil  pengamatan  bakteri  antagonis secara mikroskopis dan makroskopis
Hasil eksplorasi dari kulit perawan dan kulit pulihan tanaman karet dihasilkan sebanyak  10  isolat  bakteri  antagonis. Tidak  dilakukan  identifikasi  genus  atau spesies  dari  isolat–isolat  bakteri  ini sehingga  dicantumkan  kode-kode  untuk isolate  bakteri  antagonis  tersebut  yaitu isolat BA1 - BA10 (Tabel 2).
Hasil pengamatan terhadap morfologi  isolat  bakteri  antagonis  kulit pulihan  dan  kulit  perawan  tanaman  karet diperoleh sebanyak 10 isolat bakteri yang memperlihatkan perbedaan bentuk pertumbuhan  dari  setiap  isolat.  Hasil pengamatan  visual  menunjukkan  bahwa bentuk  koloni  bundar  untuk  isolat  BA5, BA7dan  BA8,  Bundar  dengan  tepian timbul  isolat  BA2,  bundar  dengan  tepian menyebar isolat BA4, keriput isolat BA1, konsentris isolat BA6 dan BA9, kompleks isolat  BA10.  Warna  koloni  kream ditunjukan  oleh  isolat  BA1,  BA3,  krem dengan  tengah  putih  susu  isolat  BA2, kream  kekuningan  isolat  BA6,  kuning bening  Isolat  BA5,  kuning  cerah  BA8, kuning  tua  isolat  BA9,  putih  isolat  BA7, putih  bening  isolat  BA4,  putih  bening ditengah  terdapat  macam  warna  isolat
BA10. Elevasi berbukit–bukit isolat BA1, berbukit BA10, seperti tombol isolat BA2 dan BA6, cembung  isolat BA3 dan BA5, datar  isolat  BA4,  timbul  isolat  BA7  dan BA8,  kawah  BA9.  Tepian  licin  terdapat
pada  isolat  BA1,  BA2,  BA3,  BA5,  BA6, BA8,  seperti  wol  isolat  BA4,  berombak isolat BA9, berlekuk BA10.
Tabel  2.  Karekterisasi  Morfologi  Koloni  Isolat  Bakteri  Antagonis  dari  bidang  sadap
Tanaman Karet Kode Isolat Bentuk Karakteristik morfologi Warna Elevasi Tepian Gram BA1 Keriput Krem Berbukit- bukit Licin Positif BA2 Bundar dengan tepian timbul Krem dengan tengah putih Seperti tombol Licin Negatif BA3 Rizoid Bundar dengan tepian menyebar Krem Cembung Licin Negatif BA4 Putih bening Datar Seperti wol Positif BA5 Bundar Kuning bening Cembung Licin Positif BA6 Konsentris Krem kekuningan Seperti tombol Licin Negatif BA7 Bundar Putih Timbul Kerang Negatif BA8 Bundar Kuning cerah Timbul Licin Negatif BA9 Konsentris Kuning tua Kawah Beromba k Positif BA10 Kompleks Putih bening di tengah terdapat bermacam warna Berbukit Berlekuk Positif
Bakteri  juga diuji  kemampuannya untuk  menahan  zat  warna Crystal  violet, dengan  prosedur  yang  diciptakan  oleh Christian  Gram  (Denmark).  Jika  setelah dicuci  bakteri  dapat  menahan  zat  warna
tersebut  bakteri  akan  berwarna  biru  dan disebut Gram positif atau bereaksi positif terhadap  pewarnaan  dengan  cara  gram. Jika  tidak  berwarna  biru,  bakteri  disebut gram  negatif.  Hasil  pewarnaan  gram,
koloni  isolat  bakteri  terdapat  5  isolat bakteri  gram  positif  yaitu  BA1,  BA4, BA5,  BA9,  BA10  serta  5  bakteri  gram negatif yaitu BA2, BA3, BA6, BA7, BA8.

## KESIMPULAN
Isolat bakteri BA10 mampu menghambat  penyakit  bidang  sadap mouldyrot yang disebabkan oleh Ceratocystis fimbriata sebesar 92,98%  di laboratorium.  Bakteri  antagonis  tersebut memiliki ciri antara lain: bentuk kompleks,  warna  putih  bening  ditengah memiliki bermacam warna, elevasi berbukit, tepian berlekuk dan gram positif. Bakteri  antagonis  lainnya  yang  memiliki penghambatannya  di  atas  80%  ada  lima isolat  bakteri  yaitu  BA10,  BA9,  BA4, BA5  dan  BA1.  Diharapkan  adanya penelitian lanjutan mengenai kemampuan bakteri antagonis  yang diperoleh tersebut untuk  mengendalikan  penyakit  Mouldy rot (Ceratocystis fimbriata) skala lapangan sehingga nantinya akan diperoleh  formulasi  biofungisida  untuk mengendalikan penyakit tersebut.

## DAFTAR PUSTAKA
Andriyanto,  M  dan  R.  Tistama.  2014. Perkembangan dan upaya pengendalian  kering  alur  sadap (KAS) pada tanaman karet (Hevea brasilensis).  Warta  Perkaretan. 33(2):89- 102.
Baker, K.F., Cok. R. J., Garet S. O. 1986.
Biological Control of Plant Pathogens  American  Phytopath.
St. Paul. Minesota.
Calvo, J.V Carvente, MF De Orellano, D Benuzzi,  Miss  de  Tosetti,  2003. Improvment In The Biocontrol Of Post  Harvest  Disease  Of  Apples With The Use Of Yeast Mixtures, biocontrol, 48 (5) :579-593.
Compant,  S.,  Duffy  B.,  Nowak,  J.  Cle’ Cle’Ment dan Barka E.D.A. 2005. Use Plant growth-promoting bacteria  for  biocontrol  of  plant disease: Principles, mechanisms of action and future prospects. Applied and Enviromental Microbiology 72(9):4949-4959. Eliza, M, A., Djatnika, I., Widodo. 2007. Karakter  Fisiologis  dan  Peranan Antibiosis Bakteri Perakaran
Graminae Terhadap Fusarium dan Pemacu  Pertumbuhan  Tanaman Pisang.  Balai  Penelitian  Tanaman Buah Tropika. Solok.
Iskarlia, G.R., L. Rahmawati, U.
Chasanah.  2014.  Fungisida  nabati dari tanaman serai wangi (Cymbopogon nardus) untuk menghambat  pertumbuhan  jamur pada batang karet (Hevea brasiliensis Muell. Arg). Polhasains Jurnal Sains dan Terapan Politeknik Hasnur.
3(1):1-8.
Purwantisari  S,  Pujiyanto  S,  Ferniah  RS,
2005.  Uji  Efektifitas  Bakteri Kitinolitik  Sebagai  Pengendali Pertumbuhan  Kapang  Patogen Penyebab Penyakit Utama Tanaman  Sayuran  dan  Potensinya sebagai Bahan Biofungisida Ramah Lingkungan. Laporan Penelitian. Dosen Muda.
Semarang.
Universitas
Diponegoro.
Schaad, N. W., Jones, J. B. And Chun. W. 2001. Plant  Patogenic  Bacteria. Third  Edition.  The  American Pathological  Society.  St.  Paul Minnesota.
Soepena,  H.  1983.  Pedoman  Pengenalan dan Penanggulangan Penyakit
Tanaman  Karet.  Hal.  8.  Balai Penelitian Perkebunan Sungei
Putih.
Suwarto.  1984.  Penyakit  Bidang  Sadap, Mouldy rot. Pada Tanaman Karet. Hal.  1  -  5.  Balai  Penelitian. Perkebunan Sungai Putih.