https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2021.Vol.5.No.3.183 e - ISSN 2550-0929

## Efektivitas Pemanenan Mikroalga (Spirulina platensis) dengan Metode Elektrokoagulasi menggunakan Tegangan yang Berbeda
The effectiveness harvesting of microalgae ( Spirulina platensis ) with electrocoagulation method using different voltage
Aidil Fadli Ilhamdy 1 , Ginanjar Pratama 2* , Jumsurizal 1 , Raja Marwita Sari Putri 1 , Darma Saputra 1
1 Jurusan Teknologi Hasil Perikanan, Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan, Universitas Maritim Raja Ali Haji, Tanjungpinang, 29111, Indonesia
2 Jurusan Perikanan, Fakultas Pertanian, Universitas Sultan Ageng Tirtayasa, Serang, 42122, Indonesia
* Korespondensi: ginanjarpratama@untirta.ac.id

## ABSTRAK
Penelitian budidaya Spirulina platensis skala laboratorium di Indonesia mengalami perkembangan yang cukup signifikan, tetapi banyak kendala pada saat pemanenan yaitu mulai dari harga yang tinggi, cara pemanenan yang kurang efektif dan waktu pemanenan yang sangat lama. Oleh karena itu penelitian ini bertujuan untuk mengetahui efektivitas penggunaan  metode  elektrokoagulasi  dalam  pemanenan S.  platensis menggunakan tegangan  yang  berbeda.  Tahapan  penelitian  meliputi  budidaya  mikroalga,  proses elektrokoagulasi,  dan  pemanenan S.  platensis ,  kemudian  dilanjutkan  dengan  analisis biomassa S.  platensis ,  komposisi  proksimat,  dan  kualitas  air  (pH,  suhu,  dan  kadar  besi (Fe)).  Perlakuan  panen  mikroalga  dengan  metode  elektrokoagulasi  menggunakan tegangan 0, 5, 10 dan 15 volt (kode masing-masing F0, F1, F2, dan F3). Panen biomassa terbaik  dengan  elektrokoagulasi  dari  perlakuan  F3  adalah  6,05  gr/L.  Hasil  analisis proksimat S.  platensis pada  perlakuan  F0,  F1,  F2,  dan  F3  berturut-turut  yaitu  kadar  air sebesar 24,58%; 12,32%; 15,36%; 17,48%, kadar abu sebesar 26,56%; 22,42%; 26,53%; 34,99%,  kadar  protein  sebesar  34,24%;  30,26%;  25,81%;  21,67%,  kadar  lemak  sebesar 1,27%; 0,86%; 1,65%; 0,65%, dan kadar karbohidrat sebesar 13,35%; 34,15%; 30,66%; 25,22%. Hasil kualitas air perlakuan F0, F1, F2, dan F3 berturut-turut adalah pH 7, 7, 9, 8, suhu 32°C, 32°C, 32°C, 34°C, kadar besi (Fe) 0,1 mg/L; 8,01 mg/L; 12,58 mg/L; 12,29 mg/L.  Perlakuan  terbaik  terjadi  pada  pemanenan  F3  karena  biomassa  yang  dipanen sangat tinggi.
Kata kunci : elektrokoagulasi; metode pemanenan; Spirulina platensis

## ABSTRACT
Research  on  laboratory  scale Spirulina  platensis cultivation  in  Indonesia  has developed quite a lot, however, several obstacles occur at harvest time, ranging from high prices and a very long time. Therefore this study aims to determine the effectiveness of the  use  of  electrocoagulation  in  harvesting S.  platensis using  different  voltage.  The research  phase  included  microalgae  cultivation,  electrocoagulation  process,  and harvesting  of S.  platensis ,  then  continued  with  an  analysis  of  biomass S.  platensis , proximate composition, and water quality (pH, temperature, and Ferro (Fe) content). The treatment  of electrocoagulation  method  harvesting  of microalgae  with  voltages  0,  5,  10, and  15  volts  (F0,  F1,  F2,  and  F3,  respectively)  were  applied  in  this  study.  The  best biomass  harvested  with  electrocoagulation  from  F3  treatment  was  6.05  gr/L.  The proximate  content  of S.  platensis with  F0,  F1,  F2,  and  F3  treatments  were  moisture 24.58%,  12.32%,  15.36%,  17.8%,  ash  26.56%,  22.42%,  26.53%,  34.99%,  protein
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2021.Vol.5.No.3.183
34.24%,  30.26%,  25.81%,  21.67%,  fat  1.27%,  0.86%,  1.65%,  0.65%,  and  carbohydrate 13.35%,  34.15%,  30.66%,  25.22%,  respectively.  The  water  quality  result  showed  with, F0, F1, F2, and F3 treatments were pH 7, 7, 9, 8, temperature 32°C, 32°C, 32°C, 34°C, Ferro  (Fe)  0.1  mg/L,  8.01  mg/L,  12.58  mg/L,  12.29  mg/L,  respectively.  The  best treatment with electrocoagulation method harvesting was F3.
Keywords: electrocoagulation ; harvesting method ; Spirulina platensis

## PENDAHULUAN
Mikroalga  merupakan  tumbuhan air  tingkat  rendah  dengan  ukuran mikroskopis (yang tidak dapat dibedakan berdasarkan  akar,  batang,  dan  daunnya). Mikroalga  dapat  tumbuh  di  daerah  air tawar, payau, dan laut (Gami et al. 2011; Pohl et al. 1987; Puspanadan et al. 2018; Samek et  al. 2013).  Terdapat  beberapa jenis  kandungan  dari  mikroalga  yang sangat  bermanfaat  bagi  manusia,  seperti xanthophyll ,  lutein, β-carotene ,  vitamin C,  vitamin  E,  asam  linoleat  (LA), γ- linoleic acid (GLA), arachidonic  acid (AA), eicosapentaenoic  acid (EPA),  dan docosahexaenoic acid (DHA) (Ambrozova et  al. 2014;  Spolaore et  al. 2006;  Zhu et  al. 2018).  Mikroalga memiliki polisakarida yang dapat
diaplikasikan  pada  kosmetik,  makanan fungsional,  zat  aditif  makanan,  dan bioremediasi  (Spolaore et  al. 2006). Spirulina platensis merupakan mikroalga yang banyak dibudidayakan di Indonesia karena  mikroalga  ini  memiliki  keunikan. Salah satu ciri khasnya adalah kandungan nutrisinya yang lengkap terutama protein mencapai 60-71% (Hadiyanto dan
Hendroko  2014).  Kandungan  tersebut mudah  diserap  dan  dicerna  oleh  tubuh manusia  karena  memiliki  dinding  sel yang lunak (Promya et al. 2008).
Banyak  penelitian  budidaya S. platensis yang  telah  dilakukan  dalam skala  laboratorium  karena  tingginya permintaan  terhadap S.  platensis di pasaran  (Soni et  al. 2017).  Kendati demikian,  tantangan  dan  kendala  yang dihadapi  dalam  penerapan  skala  usaha adalah teknologi pemanenannya.
Menurut  Sim et  al. (1988),  untuk menghasilkan biomassa yang lebih tinggi,  teknik  pemanenan  memainkan peran penting dalam  budidaya.  Beberapa
cara  pemanenan  dalam  budidaya S.
platensis adalah skrining, getaran ultrasonik,  flotasi, flokulasi,  sedimentasi,
filtrasi,  dan  sentrifugasi  (Barros et  al. 2015; Sim et al. 1988; Singh dan Patidar 2018).
Chen et  al. (2011)  menyatakan bahwa  pemisahan  mikroalga  dari  media cair  secara  efektif  dapat  dilakukan menggunakan sentrifugasi kecepatan tinggi, meskipun dalam skala laboratorium proses ini efektif
digunakan,  namun  proses  ini  juga memiliki  kekurangan  dalam  hal  biaya operasional.  Menurut  Grima et  al.
(2003),  proses  pemanenan  mikroalga dengan  ukuran  sel  yang  besar  paling efektif  diterapkan  menggunakan  metode filtrasi.  Namun,  proses  filtrasi  belum sesuai  untuk  pemanenan  mikroalga dengan  ukuran  sel  yang  kecil,  dan  pada metode  ini  waktu  pemanenan  yang dibutuhkan lebih lama.
Salah satu cara pemanenan mikroalga  yang  cepat  dan  praktis  adalah dengan elektrokoagulasi (Ghernaout 2019).  Menurut  Mollah et  al. (2001), elektrokoagulasi adalah proses pengendapan  dan  penggumpalan  partikel halus  dalam  air,  menggunakan  energi listrik. Penelitian tentang elektrokoagulasi untuk pemanenan mikroalga jenis S. platensis masih dalam tahap  pengembangan  (Milledge  dan Heaven 2013). Oleh karena itu, penelitian ini bertujuan untuk mengetahui efektivitas  penggunaan  elektrokoagulasi dalam pemanenan S. platensis menggunakan tegangan yang berbeda.

## METODE PENELITIAN
Sampel S.  platensis berasal  dari Balai Besar Pengembangan Budidaya Air Payau  (BBPBAP),  Jepara,  yang  di
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2021.Vol.5.No.3.183 e - ISSN 2550-0929
kultivasikan  di  Laboratorium  Kimia Fakultas  Ilmu  Kelautan  dan  Perikanan Universitas  Maritim  Raja  Ali  Haji  untuk dilakukan pengujian lebih lanjut.

## Bahan
Bahan  utama  yang  digunakan adalah S.  platensis .  Bahan  lain  yang digunakan adalah akuades, alkohol (Merck,  99%),  NaNO 3 (Merck,  99%), NaH 2 PO 4 (Merck,  99%),  Na 2 EDTA (Merck,  99%),  H 3 BO 3 (Merck,  99%), MnCl2  (Merck,  99%),  FeCl 3 (Merck, 99%),  vitamin  B 12 (IPI,  72%),  klorin (Merck,  99%)  dan  natrium  (Merck, 99%).

## Alat
Alat-alat  yang  digunakan  meliputi multitester  (Lutron  YK  2005  WA), Atomic  Absorption  Spectrophotometer (AAS) (Shimadzu AA-7000), spektrofotometer UV-Vis (Shimadzu UV 1800),  oven  (Memmert  UN55),  soxhlet
(IWAKI  Soxh  Set  1000),  Kjeldahl analisis  (KjelFlex  K-360)  dan  tanur (Thermolyne F6010),

## Proses Kultivasi (Ilhamdy et al. 2017)
Sebanyak  2  ml  isolat S.  platensis diinokulasi ke dalam 3 liter media Walne (100    g  NaNO 3 ;  20  g  NaH 2 PO 4 ;  45  g Na 2 EDTA; 33,6 g H 3 BO 3 ; 0,36 g MnCl 2 ; 1,3 g FeCl 3 ). Selanjutnya proses inkubasi dilakukan  selama  seminggu.  Pada  proses ini  inokulan  yang  telah  dibudidayakan dipindahkan sebanyak 3 L ke dalam 30 L media  Walne.  Budidaya  dilakukan  pada wadah  dengan  aerasi nonstop di  bawah sinar  lampu  dan  ditempatkan  pada  suhu kamar.  Pada  proses  ini  dilakukan pengumpulan data pertumbuhan mikroalga  setiap  24  jam  yang  meliputi Optical  Density (OD),  pH,  dan  suhu. Produktivitas biomassa diukur menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis dengan  panjang  gelombang  620  nm berdasarkan  densitas  optiknya  (OD) selama  periode  pertumbuhan.  Mikroalga yang telah mencapai ukuran OD 0,5 (fase stationer)  kemudian  dipanen  (Addini et al. 2017).

## Proses  Elektrokoagulasi  (Modifikasi Uduman et al. 2011)
Pertumbuhan mikroalga yang telah mencapai  ukuran  OD  0,5 (fase  stationer) kemudian diambil dan dimasukkan kedalam wadah berisi air laut sebanyak 1 L.  Rangkaian  elektrokoagulasi  (Gambar 1)  kemudian  dipersiapkan  dan  bagian elektrodanya (anoda dan katoda) selanjutnya  dipasang  kedalam  wadah secara berlawanan. Plat elektroda rangkaian  elektrokoagulasi  ini  terbuat dari  plat stainless  steel. Percobaan dilakukan  dalam  jangka  waktu  10  menit dengan  tegangan  konstan masing-masing perlakuan  yaitu  5,  10,  dan  15  volt. Setelah mencapai waktu yang ditentukan proses  ini  dihentikan.  Sebelum  sampel diambil,  mikroalga  didiamkan  selama  5 menit  untuk  memastikan  mikroalga terpisah dan terkonsentrasi secara sempurna  dengan  cara  mengendap  atau mengapung  ke  permukaan.  Selanjutnya sampel  diambil  menggunakan plankton net dan  ditiriskan  selama  15  menit, kemudian  dilakukan  uji  keefektivitasan pemanenan  (rendemen),  kualitas  air, kadar besi (Fe), dan proksimat.

## Kualitas Air
Pengamatan  kualitas  air  meliputi pH, suhu, dan kadar besi (Fe). Pengecekan  pH  dan  suhu  dilakukan menggunakan multitester pada air sebelum dan sesudah pemanenan (Ilhamdy et  al. 2017).  Kadar  besi  (Fe) pada  air  baru  diuji  setelah  pemanenan dilakukan.  Pada  tahap  ini  dilakukan dengan  cara  mempersiapkan  100  ml larutan  sampel  kemudian  dilakukan penambahan  5  ml  HNO 3 selanjutnya dipanaskan hingga larutan tersebut hampir  kering.  Setelah  hampir  kering ditambahkan  50  ml  akuades  dan  di masukan  ke  dalam  labu  ukur  100  ml melalui  kertas  saring  dan  ditambahkan akuades  hingga  batas  tera  labu  ukur. Selanjutnya  dilakukan  pembuatan  kurva kalibrasi  menggunakan  larutan  baku  Fe dengan  cara  memasukkannya  ke  dalam AAS  menggunakan  konsentrasi  yang berbeda.  Pengukuran  dilakukan  dengan
Ilhamdy et al.: Karakteristik Rumput Laut Hijau (Caulerpa microphysa dan Codium sp) p-ISSN 2550-1232 https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2020.Vol.4.No.1.96
panjang  gelombang  AAS  sebesar  248,3 nm  hingga  didapatkan  persamaan  garis regresi.  Selanjutnya larutan sampel yang telah  dipersiapkan  tadi  diukur  dengan panjang  gelombang  yang  sama  dan hasilnya  kemudian  dihitung  berdasarkan persamaan  regresi  yang  telah  dibuat menggunakan  larutan  baku  Fe  (Siahaan 2019).

## Analisis Proksimat
Analisis  proksimat  yang  digunakan mengacu pada AOAC (2007). S. platensis yang  dipanen  dalam  keadaan biomassa  basah  kemudian  dianalisis kadar  air,  abu,  protein,  lemak  dan karbohidratnya.  Kadar  air  ditentukan menggunakan  oven  dengan  suhu  100ºC. Kadar  abu  diperoleh  dengan  cara membakar sampel dalam tanur pada suhu (600ºC)  hingga  terbentuk  abu.  Kadar protein  kasar  ditentukan  menggunakan metode  Kjeldahl,  dan  kadar  lemak menggunakan soxhlet, serta nilai karbohidrat dihitung menggunakan
konsep by difference .
Analisis Data (Steel dan Torrie 1991) Pada analisis data dilakukan dengan bantuan komputer program SPSS 22.  Rancangan  percobaan  ada  penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap (RAL). Perlakuan sampel menggunakan  beda  tegangan  yaitu  0,  5, 10,  dan  15  volt.  Kode  perlakuan  sampel yaitu  F0  (0  volt),  F1  (5  volt),  F2  (10 volt),  dan  F3  (15  volt)  dengan  tiga  kali pengulangan.  Model  rumus  rancangan yang digunakan adalah:
Yijk = μ + τi + εij
Keterangan: Yijk   : nilai pengamatan pada perlakuan ke-i & ulangan ke-j μ        :  nilai tengah umum τi       : pengaruh perlakuan ke-i εij      : galat percobaan pada perlakuan ke-i & ulangan ke-j.
Gambar 1.   Rancangan alat elektrokoagulasi (Keterangan: (1) power supply , (2) variabel power supply , (3) voltmeter , (4) katoda (+), (5) anoda (-), (6) plat stainless steel )

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Rendemen S. platensis
Mikroalga  yang  dibudidayakan  di akuarium  dipindahkan  ke  wadah  satu liter,  kemudian  anoda  dan  katoda dimasukkan  ke  dalam  wadah  dan  diberi energi  oleh  arus  searah  (DC).  Perlakuan F0 dipanen menggunakan jaring plankton, sedangkan untuk perlakuan F1, F2, F3 menggunakan metode elektrokoagulasi dengan tegangan masing-masing 5, 10, 15 volt. Berdasarkan Tabel 1 dapat dilihat bahwa rendemen mikroalga yang dipanen dengan perlakuan F3 memperoleh rendemen  tertinggi  yaitu  6,05  gr  dalam satu  liter  air  budidaya.  Penelitian  ini menunjukkan  bahwa  pemanenan S.
platensis dengan metode elektrokoagulasi 15  volt  menghasilkan  biomassa  lebih banyak  dibandingkan  dengan  plankton net (F0). Menurut  Uduman et  al. (2011), gumpalan sel mikroalga yang mengapung atau  mengendap  dikarenakan  adanya proses  elektrokoagulasi.  Hal  itu  terlihat dari  adanya  gelembung-gelembung  yang ditimbulkan  oleh  katoda  sehingga  sel mikroalga  menggumpal  dan  mengapung ke  permukaan  (Mollah et  al. 2001).  Jika dua  buah  elektroda  ditempatkan  dalam sebuah  elektrolit  dan  dialiri  arus  listrik searah, maka akan terjadi gejala dekomposisi  elektrolit.  Peristiwa  ini membuat  ion  negatif  tereduksi  sehingga berpindah  ke  anoda    dan  ion  positif (kation) berpindah ke katoda. Pada anoda akan  dihasilkan  gas  berupa  gelembung udara  dan  buih,  kemudian  gas  akan mengikat partikel koloid mikrolga sehingga  partikel  yang  tidak  stabil tersebut terdorong ke permukaan (Hakizimana et al. 2017). Proses pemanenan menggunakan elektrokoagulasi dapat dilihat pada Gambar 2.
Tabel 1. Rendemen hasil panen mikroalga S.platensis . Perlakuan Berat sampel (gr) F0 3,24 ± 0,15 F1 1,03 ± 0,01 F2 2,29 ± 0,34 F3 6,05 ± 0,61
Gambar 2. Proses pemanenan S. platensis menggunakan metode elektrokoagulasi
Ilhamdy et al.: Karakteristik Rumput Laut Hijau (Caulerpa microphysa dan Codium sp) p-ISSN 2550-1232 https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2020.Vol.4.No.1.96

## Kualitas Air
Perubahan  suhu  pada  kualitas  air
yang diamati tidak menunjukkan perubahan  yang  berarti.  Pada  perlakuan F0, F1, dan F2 suhunya tidak mengalami perubahan (jumlahnya tetap sebelum dan sesudah  panen). S.  platensis dapat mentolerir  suhu  pada  kisaran  20-40ºC, dan  suhu  optimum  antara  25-35ºC (Yilmaz 2012). Pada perlakuan F3 terjadi peningkatan  suhu  sebesar  1ºC  dari  33ºC menjadi  34ºC.  Menurut  Uduman et  al. (2011),  peningkatan  biomassa  hasil panen  mikroalga  juga  disebabkan  oleh sistem konduktivitas listrik yang menyebabkan peningkatan suhu, sehingga tegangan yang besar menyebabkan suhu media meningkat. Pada parameter pH F0, F1, dan F3 setelah dan sebelum panen tidak mengalami  perubahan  yang  signifikan (Tabel 2). Akan tetapi, pada perlakuan F2 terjadi  perubahan  pH  kearah  basa  pada saat  setelah  pemanenan.  Perubahan tersebut  terjadi  akibat  jumlah  ion  OH - yang  dihasilkan  meningkat.  Menurut Ni'am et  al. (2007)  pemanenan  dengan elektrokoagulasi  akan  mengakibatkan akumulasi  OH - sehingga  nilai  pH meningkat. Pada warna air yang diamati, menunjukkan  adanya  perubahan  warna setelah  pemanenan.  Perubahan  yang terjadi  secara  visual  dipengaruhi  oleh tegangan  yaitu  semakin  tinggi  tegangan yang  diberikan  maka  warna  yang
dihasilkan  semakin  cokelat  (Gambar  3). Hal  itu  dikarenakan  adanya  korosi  pada plat stainless  steel yang  digunakan sebagai  elektroda  (anoda  dan  katoda) sehingga  menyebabkan  media  berubah warna  (Mollah et  al. 2001).  Proses elektrokoagulasi melepaskan gas hidrogen, yaitu reaksi elektrolisis (reduksi)  di  katoda,  sedangkan  pada anoda  terjadi  reaksi  oksidasi  (Holt et  al. 2002).
Berdasarkan  hasil  pengujian  kadar besi  dalam  air  diketahui  bahwa  semua kadar  besi  yang  dipanen  menggunakan metode elektrokoagulasi
hasilnya melebihi  ambang  batas  yang  telah ditetapkan  oleh  Kementerian  Kesehatan Republik Indonesia untuk pengolahan air limbah  (<  0,3  mg/L)  (Koswojo et  al. 2010). Beberapa faktor yang menyebabkan tingginya kadar besi adalah korosi pada elektroda pada proses pemanenan.  Hal  itu  senada  dengan pernyataan  Hakizimana et  al. (2017)
bahwa  proses  oksidasi  logam  atau elektrolit lainnya menyebabkan terjadinya  korosi  sehingga  besi  dapat mengalami korosi. Lama waktu pengikisan  logam  menyesuaikan  dengan waktu  panen  dan  tegangan  (Ghosh et  al. 2007).  Hasil  tersebut  menunjukkan semakin  tinggi  tegangan  yang  diberikan maka  kadar  besinya  akan  semakin tinggi (Tabel 2).
Tabel 2. Parameter kualitas air setelah pemanenan
Perlakuan pH Suhu ( o C) Kadar Besi (Fe) (mg/L) Sebelum Panen Sesudah Panen Sebelum Panen Sesudah Panen F0 7 7 32 32 0,10 ± 0,03 F1 7 7 32 32 8,01 ± 5,10 F2 7 9 32 32 12,29 ± 5,18 F3 8 8 33 34 12,58 ± 0,65
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2021.Vol.5.No.3.183 e - ISSN 2550-0929

## Gambar 3. Warna air setelah pemanenan

## Komposisi Proksimat
Kadar  air  pada  semua  perlakuan dengan  metode  elektrokoagulasi  lebih rendah dibandingkan dengan yang dipanen  menggunakan  plankton  net (Tabel  3).  Hal  tersebut  dikarenakan proses  pemanenan  dengan  menggunakan elektrokoagulasi  sangat  efisien  dalam mengeluarkan air ( dewatering ) (Ghernaout 2019). Proses elektrokoagulasi  memiliki  keuntungan menghilangkan  partikel  koloid  terkecil karena  medan  listrik  yang  diterapkan dapat  menetralkan  muatan sisa,  sehingga memudahkan  koagulasi  (Al-Shannag et al. 2013).  Pada  perlakuan  F3  nilai  kadar abu  (34,99  %)  sangat  tinggi;  Hal  ini disebabkan  oleh  proses  elektrokoagulasi menggunakan  tegangan  tinggi.  Nilai tersebut  dipengaruhi  oleh  korosi  pelat stainless  steel  selama  proses  pemanenan dan  kenaikan  temperatur  yang  akan mempercepat  terjadinya  korosi  (Uduman et  al. 2011).  Hal  itu  terlihat  dari  suhu pada  perlakuan  F3  yang  mengalami peningkatan sebesar 1ºC setelah pemanenan. Kadar  protein  dengan  pemanenan elektrokoagulasi lebih rendah dibandingkan dengan pemanenan dengan plankton net. Hal ini dikarenakan adanya proses denaturasi protein karena semakin tinggi  tegangan  maka  semakin  rendah kandungan proteinnya. Menurut Ishiwatari et  al. (2013),  denaturasi
protein  dapat  terjadi  karena  beberapa faktor, seperti perubahan garam,
perubahan  pH  yang  drastis,  dan  logam berat.  Pada  proses  elektrokoagulasi, garam  berubah  sesuai  dengan  nilai tegangan  sehingga  proses  denaturasi
protein  akan  terjadi  seiring  dengan tingginya tegangan yang diberikan (Hakizimana et al. 2017).
Nilai  kadar  lemak  mengikuti  pola yang  terjadi  pada  protein,  hal  ini disebabkan  oleh  adanya  oksidasi  lemak sehingga  kadarnya  menjadi  menurun seiring  meningkatnya  tegangan  yang diberikan.  Menurut  Ghernaout  (2019) polimer-polimer yang mengandung rantai panjang  dapat  teroksidasi  seiring  dengan penambahan  tegangan  yang  diberikan. Selain  itu, S.  platensis juga  merupakan mikroalga  dengan  kandungan  lemak rendah  0,1-7%.  Sebanyak  25-60%  dari total  lemak  merupakan  asam  lemak  tak jenuh  yang  memiliki  ikatan  rangkap sehingga mudah untuk teroksidasi
(Spolaore et  al. 2006).  Kandungan karbohidrat pada semua perlakuan berbeda  nyata.  Nilai  terkecil  ditemukan pada  perlakuan  F0  dan  tertinggi  pada perlakuan  F2.  Nilai  tersebut  dipengaruhi oleh  adanya  proses  koagulasi  terhadap karbohidrat  yang  terkandung  di  dalam mikroalga  (Uduman et  al. 2011).  Selain itu, karbohidrat juga nilainya dipengaruhi oleh  kadar  air  karena  perhitungannya dilakukan  secara by  difference (Yilmaz 2012).
Ilhamdy et al.: Karakteristik Rumput Laut Hijau (Caulerpa microphysa dan Codium sp) p-ISSN 2550-1232 https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2020.Vol.4.No.1.96

## Tabel 3. Komposisi proksimat Spirulina platensis
Parameter Perlakuan F0 F1 F2 F3 Kadar air (%) 24,58 ± 0,12 d 12,32 ± 0,10 a 15,36 ± 0,23 b 17,48 ± 0,06 c Kadar abu (%) 22,42 ± 0,06 a 26,56 ± 0,16 b 26,53 ± 0,24 b 34,99 ± 0,11 c Kadar lemak (%) 1,65 ± 0,01 d 1,27 ± 0,03 c 0,86 ± 0,06 b 0,65 ± 0,06 a Kadar protein (%) 34,24 ± 0,00 d 30,26 ± 0,00 c 25,81 ± 0,14 b 21,67 ± 0,13 a Kadar karbohidrat (%)   17,11 ± 0,25 a 29,59 ± 0,23 c 31,44 ± 0,16 d 25,22 ± 0,09 b
Ket: huruf superscript yang berbeda menunjukkan adanya beda nyata pada tingkat α : 0,05

## KESIMPULAN
Pemanenan Spirulina  platensis menggunakan  metode  elektrokoagulasi dengan  tegangan  15  volt  menghasilkan lebih banyak biomassa bila dibandingkan dengan  menggunakan  plankton  net. Namun,  kandungan  proksimat  yang dihasilkan menggunakan metode elektrokoagulasi lebih rendah.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Peneliti  mengucapkan  terima kasih  banyak  kepada  Kementerian  Riset, Teknologi  dan  Perguruan  Tinggi  atas pemberian  dana  hibah  “Penelitian  Dosen Pemula”.

## DAFTAR PUSTAKA
Addini  I,  Saputra  D,  Ilhamdy  AF, Julianto  T.  (2017).  Pertumbuhan mikroalga Spirulina  platensis yang dikultur  dengan  media  teknis. Jurnal  Intek  Akuakultur. 1(1):  51- 52.
Al-Shannag  M,  Bani-Melhem  K,  Al- Anber  Z,  Al-Qodah  Z.  (2013).
Enhancement of COD-nutrients removals and filterability of secondary clarifier municipal wastewater influent using electrocoagulation technique. Separation Science and Technology . 48(4): 673-680. https://doi.org/10.1080/01496395.2 012.707729.
Ambrozova  JV,  Misurcova  L,  Vicha  R, Machu  L,  Samek  D,  Baron  M, Micek  J,  Sochor  J,  Jurikova  T. (2014).  Influence  of  extractive
solvents  on  lipid  and  fatty  acids content  of  edible  freshwater  algal and  seaweed  products,  the  green microalga Chlorella kessleri and the cyanobacterium Spirulina platensis . Molecules . 19(2): 2344-2360. https://doi.org/10.3390/molecules19 022344. [AOAC] Association of Official Analytical Chemist. (2007). Official of  Analysis  of  the  Association  of Official  Analytical  of  Chemist.
Mayland  (USA).  The  Association of  Official  Analytical  of  Chemist,
Inc.
Barros  AI,  Gonçalves  AL,  Simões  M, Pires JC. (2015). Harvesting techniques applied to microalgae: A review. Renewable  and  Sustainable
Energy  Reviews .  41:  1489-1500. https://doi.org/10.1016/j.rser.2014.0 9.037.
Chen  CY,  Yeh  KL,  Aisyah  R,  Lee  DJ, Chang  JS.  (2011).  Cultivation, photobioreactor design and harvesting of microalgae for
biodiesel  production:  A  critical review. Bioresource  Technology . 102: 71-81. https://doi.org/10.1016/j.biortech.20 10.06.159. Gami  B,  Naik  A,  Patel  B.  (2011).
Cultivation  of Spirulina species  in different  liquid  media. Journal  of Algal  Biomass  Utilization .  2(3):15- 26.
Ghernaout  D.  (2019).  Electrocoagulation
https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2021.Vol.5.No.3.183 e - ISSN 2550-0929
process for microalgal biotechnology:  A  review. Applied Engineering . 3(2): 85-94. https://doi.org/10.11648/j.ae.20190 302.12. Ghosh  D,  Solanki  H,  Purkait  MK. (2008). Removal of Fe (II) from tap water by electrocoagulation technique. Journal  of  Hazardous Materials . 155(1): 135-143. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.20 07.11.042. Grima  EM,  Belarbi  EH,  Acien  FG,
Medina  AR,  Chisti  Y.  (2003). Recovery  of  microalgal  biomass and  metabolites:  process  options and economics. Biotechnology Advances . 20: 491-515. https://doi.org/10.1016/S0734- 9750(02)00050-2.
Hadiyanto  H,  Hendroko  R.  (2014). Integrated  biogas-microalgae  from waste  waters  as  the  potential biorefinery  sources  in  Indonesia. Energy  Procedia .  47:  143-148. https://doi.org/10.1016/j.egypro.201 4.01.207.
Hakizimana  JN,  Gourich  B,  Chafi  M, Stiriba Y, Vial C, Drogui P, Naja J.
(2017).  Electrocoagulation  process in  water  treatment:  A  review  of electrocoagulation modeling approaches. Desalination .  404:  1- 21.
https://doi.org/10.1016/j.desal.2016. 10.011.
Holt  PK,  Barton  GW,  Wark  M,  Mitchell
CA. (2002). A quantitative comparison between chemical dosing and electrocoagulation. Colloids and Surfaces A: Physicochemical  and  Engineering Aspects . 211: 233-248. https://doi.org/10.1016/S0927- 7757(02)00285-6.
Ilhamdy AF, Nurhayati T, Setyaningsih I,
Santosa  DA.  (2017).  Optimization
process  of  ethanol  production  from microalgae Chlamydomonas sp.
ICBB  9113,  ICBB  9114,  and Synechococcus sp.  ICBB  9111.
Asian  Journal  of  Environmental
Biotechnology . 1: 10-18.
Ishiwatari  N,  Mkia  F,  Noboru  S.  (2013). Effect  protein  denaturation  degree on texture and water state of cooked meat. Journal of Food Engineering . 117: 361-369. https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2 013.03.013. Koswojo R, Utomo RP, Ju YH, Ayucitra A,  Soetaredjo  FE,  Sunarso  J,
Ismadji  S.  (2010).  Acid  green  25 removal from wastewater by organo-bentonite from Pacitan. Applied Clay Science . 48(1): 81-86. https://doi.org/10.1016/j.clay.2009. 11.023.
Milledge JJ, Heaven S. (2013). A review of the harvesting of micro-algae for biofuel  production. Reviews  in Environmental  Science  and  Bio- Technology . 12(2): 165-178. https://doi.org/10.1007/s11157-012- 9301-z. Mollah  MYA,  Schennach  R,  Parga  JR, Cocke DL. (2001). Electrocoagulation  (EC):  Science and applications. Journal of Hazardous Materials . 84(1): 29-41.
https://doi.org/10.1016/S0304-
3894(01)00176-5.
Ni’am M, Othman F, Sohaili J, Fauzia Z. (2007).  Removal  of  COD  and turbidity  to  improve  wastewater quality  using  electrocoagulation technique. The  Malaysian  Journal of  Analytical  Science .  11(1):  198-
205.
Pohl  P,  Ohlhase  MK,  Rautwurst  SK, Baasch KLK. (1987). An inexpensive  inorganic  medium    for the  mass  cultivation  of  freshwater microalgae. Phytochemistry .
Ilhamdy et al.: Karakteristik Rumput Laut Hijau (Caulerpa microphysa dan Codium sp) p-ISSN 2550-1232 https://doi.org/10.46252/jsai-fpik-unipa.2020.Vol.4.No.1.96
26(6):1657-1659. https://doi.org/10.1016/S0031- 9422(00)82264-5.
Promya  J,  Traichaiyaporn  S,  Deming  R. (2008). Phytoremediation of kitchen wastewater  by Spirulina  platensis (Nordstedt)  Geiteler  :  pigment content,  production  variable  cost and nutritional value. Maejo
International  Journal  of  Science and Technology . 20(1): 159-171. Puspanadan  S,  Wong  XJ,  Lee  CK.
(2018).  Optimization  of  freshwater microalgae, Arthrospira sp. ( Spirulina ) for high starch production. International Food Research  Journal .  25(3):  1266-
1272. Samek D, Mišurcová L, Machù L, Buòka
F, Fišera M.  (2013). Influencing of amino  acid  composition  of  green freshwater algae and cyanobacterium  by  methods  of cultivation. Turkish  Journal  of Biochemistry . 38(4): 360-368. https://doi.org/10.5505/tjb.2013.421 04. Siahaan MA. (2019). Analisis kadar besi (Fe)  pada  air  sumur  gali  penduduk wilayah Komplek Rahayu, Kelurahan  Mabar  Hilir,  Kecamatan Medan  Deli,  Kota  Medan. Jurnal
Kimia  Saintek  dan  Pendidikan .
3(1): 19-22.
Sim  TS,  Goh  A,  Becker  EW.  (1988).
Comparison of centrifugation, dissolved  air  flotation  and  drum filtration  technique  for  harvesting sewage-grown  algae. Biomass. 16: 51-62. https://doi.org/10.1016/0144-
4565(88)90015-7. Singh G, Patidar SK. (2018). Microalgae harvesting  techniques:  A  review.
Journal of Environmental Management . 217: 499-508.
https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2
018.04.010.
Soni  RA,  Sudhakar  K,  Rana  RS.  (2017). Spirulina-From growth to nutritional  product:  A  review. Trends In Food Science & Technology . 69: 157-171. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2017.0 9.010. Spolaore  P,  Cassan  CJ,  Duran  E, Isambert  A.  (2006).  Commercial applications  of  microalgae. Journal of  Bioscience  and  Bioengineering . 101(2): 87-96. https://doi.org/10.1263/jbb.101.87. Steel  RGD,  Torrie  JH.  (1991).  Prinsip dan Prosedur Statistika Suatu Pendekatan  Biometrik.    Jakarta:  PT Gramedia Pustaka Utama. Uduman N, Bourniquel V, Danquah MK, Hoadley  AFA.  2011.  A  parametric study  of  electrocoagulation  as  a recovery process of marine microalgae for biodiesel production. Chemical Engineering Journal . 174: 249-257. https://doi.org/10.1016/j.cej.2011.0 9.012. Yilmaz  HK.  (2012).  The  proximate composition and growth of Spirulina platensis biomass ( Arthrospira  platensis )  at  different temperatures. Journal  of  Animal and  Veterinary  Advances .  11(8):
1135-1138. https://doi.org/10.3923/javaa.2012.1 135.1138. Zhu C, Zhai X, Jia j, Wang J, Han D, Li Y, Tang Y, Chi Z. (2018). Seawater desalination concentrate for cultivation  of Dunaliella  salina with  floating  photobioreactor  to produce β-carotene. Algal Research . 35: 319-324. https://doi.org/10.1016/j.algal.2018. 08.035.