Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek Vanili (Vanila planifolia)  yang  diperkaya  Bakteri  Pelarut  Fosfat  dan  Bakteri

## Pelarut Kalium
(The  Effect  of  IAA  Application  on  Cuttings  of  Vanilla  [Vanilla planifolia]  which  Enriched  with  Phosphate  Solubilizing  Bacteria and Potassium Solubilizing Bacteria)
Dwi  Erwin Kusbianto 1 ,  Sri  Emiyati 1 , Tri  Candra Setiawati 2* , Gatot Subroto 1 , M. Ghufron Rosyady 1
1 Program Studi Ilmu Pertanian, Fakultas Pertanian, Universitas Jember, Jln. Kalimantan No. 37 Kampus Tegal Bojo, Jember, Jawa Timur, 68121, Indonesia
2 Program  Studi  Ilmu  Tanah,  Fakultas  Pertanian,  Universitas  Jember, Jln.  Kalimantan  No.  37 Kampus Tegal Bojo, Jember, Jawa Timur, 68121, Indonesia E-mail: candra.setiawati@gmail.com
ARTICLE INFO

## ABSTRACT
Article history Submitted: April 27, 2022 Accepted: September 12, 2022 Published: October 10, 2022 Keywords: auxin, microbial IAA, vanilla seedlings Propagation of vanilla plants is generally using vegetative methods like cuttings. The use of external growth regulators can support the growth of  nurseries.  Phosphate  solubilising  bacteria  and  potassium solubilising  bacteria  as  plant  growth  promoting  rhizobacteria  are producing  microbial  IAA.  This  study  used  auxin  in  synthetic  IAA combined with IAA microbes from phosphate solubilising bacteria and potassium  solubilising  bacteria.  This  study  aimed  to  determine  the effectiveness  of  each  microbe  at  each  dose  of  synthetic  IAA  that  was applied. The study was conducted from November 2021-April 2022 in the Biological Soil Laboratory and Greenhouse University of Jember. The  research  uses  a  randomised  block  design  with  three  replications with  the  factorial  arrangement.  The  first  factor  was  organic  matter which  was  enriched  with  bacterial  isolate  (B 0 =  control,  B 1 =  BPF isolate, and B 2 = BPK isolate). The second factor was concentration of IAA (A 0 = 0 mg.l -1 , A 1 = 100 mg.l -1 , and A 2 = 200 mg.l -1 ). The data were analysed  by  ANOVA  and  further  tested  with  Duncan  Multiple  Range Test  (DMRT)  with  a  95%  confidence  level.  The  results  showed  that treatment of synthetic IAA affects the parameters of length and volume of adventitious roots, which are effective in helping to supply nutrients with  the  best  treatment  at  a  concentration  of  200  ppm.  Meanwhile, enrichment  of  media  with  isolates  of  phosphate  solubilising  bacteria and potassium solubilising bacteria gave a better effect than control on the  observation  of  tendril  length,  number  of  leaves,  number  of adventitious  roots  and  taproots,  length  of  adventitious  roots  and taproots, the volume of adventitious roots and taproot, and fresh weight of vanilla seedlings.
Copyright  ©  2022  Author(s).  This  work  is  licensed  under a  Creative  Commons  Attribution- ShareAlike 4.0 International License.
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...

## PENDAHULUAN
Tanaman vanili ( Vanilla planofolia) merupakan salah satu tanaman perkebunan yang ada di Indonesia. Tanaman vanili adalah satu tanaman hasil introduksi dari Meksiko dan Amerika Tengah. Pada  daerah  tropis  seperti  Indonesia  vanili  telah  tersebar  dibeberapa  daerah  seperti  Jawa,  Bali, Sumatera  dan  Sulawesi.  Vanili  termasuk  dalam  family Orchidaceae sejenis  tanaman  anggrek. Kekhasan aroma dari vanili membuat buah vanili digunakan sebagai campuran dalam makanan untuk memberikan  aroma.  Vanili  menjadi  salah  satu  komoditas  perkebunan  yang  memiliki  nilai  ekspor tinggi dan berpotensi pada penerimaan devisa negara (Udarno & Hadipoentyanti, 2009).
Produksi vanili tahun 2012 mencapai 3,10 ribu ton dengan luas lahan 19,90 ribu hektar yang berasal dari perkebunan rakyat, data terakhir yaitu terjadi penurunan produksi hanya 2 ribu ton pada tahun  2014  (BPS,  2014).  Dalam  budidaya  vanili  kesulitan  yang  dialami  petani  yaitu  pada  bahan tanam  awal  vanili  atau  pembibitan.  Budidaya  vanili dapat  dilakukan  pada  lahan  yang  sempit  dan dapat dibudidayakan dengan memanfaatkan wadah seperti polybag (Jamaludin & Ranchiano, 2021). Sebagai family Orcidaceae vanili tumbuh dengan membutuhkan media tanam yang remah, memiliki sistem pengaliran yang baik dan memiliki bahan organik yang tinggi (Kartikawati & Rosman, 2018).
Perbanyakan  tanaman  vanili  umumnya  secara  vegetatif  (Ruhnayat,  2003).  Belakangan  ini penggunaan setek vanili banyak pada setek pendek untuk mengefisienkan dalam penggunaan bahan tanam  (Udia  et  al.,  2021).  Penggunaan  setek  pendek  perlu  dilakukan  pemberian  tambahan  zat pengatur tumbuh karena cadangan makanan yang sedikit dibandingkan setek panjang. Perbanyakan vanili  dilakukan  dengan  setek  panjang  dan  pendek.  Setek  panjang  5-7  ruas  dan  setek  pendek  1-3 buku. Tanaman vanili termasuk kelas monokotil sehingga perakaran utama berada di dasar batang, tersebar dan bercabang di lapisan tanah sehingga perakaran dalam vanili dangkal (Hadipoentyanti & Udarno, 1982). Sehingga dalam budidaya vanili perlu dilakukan upaya untuk memperkuat perakaran disetek vanili. Salah satu cara upaya memperkuat perkaran dengan penggunaan zat pengatur tumbuh dan pemupukan yang baik.
Penggunaan  zat  pengatur  tumbuh  dan  pupuk  dapat  menunjang  pertumbuhan  pembibitan. Penggunaan ZPT dapat mendukung upaya perkembangan pembibitan, sehingga konsentrasinya perlu diperhatikan dalam penggunaannya. Penggunaan ZPT dari golongan auksin dapat bermanfaat untuk memperbaiki  system  perakaran  dalam  setek  vanili  sehingga  pertumbuhan  dapat  lebih  optimal. (Karunia  et  al.,  2021).  Auksin  terdiri  dari  beberapa  jenis  antara  lain  IAA,  NAA,  dan  2,4-D.  IAA merupakan  auksin  yang  diproduksi  pada  jaringan  meristematik  seperti  tunas  dan  aktif  dalam pertumbuhan (Hoesen et al ., 2000).
Media tanam juga dapat memberikan pengaruh pada pembibitan. Kombinasi media tanam yang  tepat  perlu  dilakukan  untuk  memberikan  hasil  yang  optimal  dalam  pembibitan. Top  soil merupakan  tanah  yang  dapat  digunakan  sebagai  media  tanam  pembibitan  dengan  upaya memberikan campuran seperti pupuk kandang dan limbah organik seperti kompos (Laviendi  et al., 2017). Penggunaan pupuk organik bermanfaat dalam penyedian unsur hara mikro dan makro pada  tanaman,  tanah  menjadi  gembur,  dapat  memperbaiki  kondisi  struktur  dan  tekstur  tanah, memudahkan dalam perakaran dan mempengaruhi pada daya serap air pada tanah. Pada pupuk organik pelepasan unsur hara akan semakin baik jika dibantu adanya aktivitas mikroorganisme (Isnaini, 2006).
Pupuk organik yang diberikan mampu memperbaiki struktur tanah, kandungan bahan organik dapat  memperbaiki  peredaran  ukuran  pori-pori  dalam  tanah  sehingga  dapat  meningkatkan  daya
pegang air dalam tanah dan pergerakan udara di tanah lebih baik. Dalam tanah terdapat mikroba yang mendapatkan  makanan  dan  energi  dari  kompos  yang  ditambahkan  dalam  tanah.  Jika  ketersedian bahan organik dalam tanah cukup maka akan berpengaruh pada aktivitas organisme tanah sehingga mempengaruhi ketersedian unsur hara, peredaran hara dan meningkatkan pembentukan pori mikro dan makro (Setyorini, 2004).
Mikroba  spesifik  mampu  melarutkan  unsur  hara  bagi  tanaman,  diantaranya  adalah  bakteri pelarut  fosfat  (BPF)  dan  bakteri  pelarut  kalium  (BPK).  BPF  mampu  mengubah  fosfat  tidak  larut dengan  cara mensekresikan  asam  organik  seperti  asam  format,  asetat,  propionate,  laktat,  glikolat, fumarat dan suksinat (Suliasih  et  al., 2010).  BPF adalah salah satu rhizobakteri yang mempunyai peranan  dalam  meningkatkan  ketersedian  P  dalam  tanah  dan  mampu  menghasilkan  zat  pengatur tumbuh IAA ( indole acetic acid) (Rao, 1994). Penelitian yang dilakukan oleh Sudarmini et al. (2018) yang menguji pemanfaat BPF penginduksi hormon IAA dalam pertumbuhan kedelai menghasilkan BPF berpengaruh sangat nyata terhadap pertumbuhan vegetatif tanaman kedelai yaitu pada tinggi, jumlah daun, kandungan klorofil dan jumlah cabang. Bakteri pelarut fosfat mampu melarutkan fosfat yang ada dalam tanah seperti unsur Fe, Al, Ca, dan Mg menjadi unsur yang tersedia dan dapat diserap tanaman.
Unsur  kalium  berperan  penting  dalam  metabolisme  tanaman  selain  fosfat.  Kalium  adalah makronutrien  penting,  termasuk  utama  dari  ketiga  unsur  dalam  pertumbuhan  tanaman.  Berbagai anion  organik  dan  senyawa  anorganik  dapat  dinetralkan  oleh  adanya  kalium  di  dalam  jaringan tanaman. Kalium dapat mempengaruhi panjang batang dan jumlah cabang batang dalam tanaman. Penggunaan bakteri pelarut kalium dalam tanah dapat menyediakan unsur hara bagi tanaman dengan cara melepaskan unsur hara yang terikat menjadi bentuk tersedia bagi tanaman. BPK sejatinya telah ada  dalam  tanah.  Penelitian  yang  dilakukan  oleh  Syafitri  et  al.  (2019),  pemberian  bahan  organik dalam media tanam tebu memberikan pengaruh dalam peningkatan populasi bakteri pelarut kalium dan memberikan pengaruh baik pada tinggi tebu, diameter, bobot segar batang dan bobot segar akar.
Penggunaan  zat  pengatur  tumbuh  merupakan  faktor  yang  menentukan  keberhasilan  dalam perbanyakan secara bibit setek. IAA merupakan auksin sintetis yang mampu mendorong pembelahan dan  pemanjangan  sel  yang  mengakibatkan  perpanjangan  batang  sehingga  dapat  tumbuh  secara optimal.  Dalam  penelitian Gupitasari  et  al. (2019)  penggunaan  IAA  dengan  konsentrasi  100  ppm memberikan  pengaruh  pada  pertumbuhan  tinggi  setek  pucuk  jirak  yang  dikombinasikan  dengan media tanam pasir. Selain itu konsentrasi tersebut mampu memberikan hasil terbaik pada panjang akar setek pucuk jirak. Pemberian aplikasi IAA dengan dosis 100 ppm juga memberikan pengaruh terhadap peningkatan jumlah daun, panjang akar dan bobot kering akar yang diaplikasi dengan cara disemprotkan pada bibit kelapa sawit dengan intensitas penyemprotan seminggu sekali (Ali  et al., 2017).
Pengayaan bahan organik dengan BPF dan BPK diharapkan dapat menyediakan unsur P dan K terlarut pada media pembibitan vanili. Sedangkan IAA sintetis berperan sebagai Auksin eksternal yang membantu proses pembentukan akar dan pertumbuhan tunas apikal bibit vanili.  Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui peran IAA pada proses pembibitan vanili pada media yang diperkaya dengan isolat BPF dan BPK. Hasil penelitian ini akan menjadi dasar pengembangan iptek dalam mendukung perbanyakan vanili secara masal.

## METODE PENELITIAN
Kegiatan penelitian dilaksanakan dilaksanakan di Green House Fakultas Pertanian Universitas Jember. Pelaksanaan kegiatan berlangsung mulai Oktober 2021 sampai dengan Maret 2022. Bahan yang digunakan dalam penelitian ini yaitu bibit vanili, tanah steril, kompos steril, aquades, bakteri pelarut fosfat, bakteri pelarut kalium, Media NB ( Nutrient Broth ), IAA, NaOH, kertas label, polybag, plastik, dan amplop coklat. Alat yang digunakan dalam penelitian ini yaitu autoklaf, paranet, green house,  timbangan  digital,  cutter,  baskom,  cetok,  pipet,  beaker  glass,  jangka  sorong  otomatis, penggaris, sprayer, dan oven. Penelitian ini menggunakan rancangan percobaan yang disusun secara faktorial dengan pola dasar rancangan acak kelompok (RAK) dengan tiga ulangan. Faktor pertama adalah bakteri pelarut yang digunakan dalam kompos pada media tanam yang terdiri atas tiga taraf yaitu kontrol (B 0 ), bakteri pelarut fosfat (B 1 ), dan bakteri pelarut kalium (B 2 ). Faktor kedua adalah konsentrasi penggunaan IAA pada pembibitan vanili yang terdiri  atas tiga taraf yaitu: kontrol = 0 ppm (A 0 ), 100 ppm (A 1 ), dan 200 ppm (A 2 ). Data hasil percobaan dianalisis menggunakan analisis ragam,  apabila  terdapat  perbedaan  yang  nyata  diantara  perlakuan  dilakukan  uji  lanjutan menggunakan uji jarak berganda Duncan pada taraf 5%.
Isolat  bakteri  yang  digunakan  berasal  dari  biakan  Laboratorium  Biologi  Tanah  UNEJ teridentifikasi  sebagai Bacillus  sp. (Setiawati  &  Mutmainnah,  2016).  Prosedur  pembuatan  isolat bakteri  pelarut  fosfat  dan  bakteri  pelarut  kalium  diawali  dengan  merefresh  kembali  bakteri  murni pelarut fosfat dan kalium untuk mengetahui masih aktif tidaknya bakteri. Bakteri murni dipindahkan pada media NA (Natrium Agar) dengan menggoreskan bakteri murni pada media tersebut. Kemudian dibiarkan hingga membentuk goresan yang artinya bakteri masih aktif. Kemudian dari media NA bakteri  diambil  dan  dilakukan  di  laminar  secara  steril.  Bakteri  yang  berbentuk  seperti  lendir  di celupkan pada media NB ( nutrient broth ). Pembuatan NB dilakukan dengan melarutkan 80 g NB ke daam 1 l aquades, kemudian dilakukan pengadukan dan pemanasan dengan hot plate hingga larutan membentuk gelembung. Hasil isolat BPF dan BPK dicelupkan sebanyak 2 kali pada larutan NB yang masing-masing diberikan label untuk membedakan larutan BPF dan BPK. Larutan NB yang awalnya bening  akan  keruh  ketika  terdapat  bakterinya,  kemudian  larutan  dikocok  selama  3  hari  (72  jam) dalam kondisi gelap dengan 120 rpm. Kemudian larutan tersebut dinokulasi selama 21 hari untuk dapat diaplikasin pada bahan organik.
Penggunaan konsentrasi larutan IAA yang berbeda dengan tiga taraf yaitu kontrol, 100 ppm dan 200 ppm. Kontrol tanpa memberikan hormon IAA, sedangkan pembuatan larutan IAA 200 ppm yaitu dengan melarutkan 0,2 g IAA pada 1 l aquades. Saat melakukan pelarutan IAA ditambahkan 5 tetes  NaOH  untuk  memudahkan  serbuk  IAA  larut  dan  kemudian  ditambahkan  1  l  aquades. Sedangkan untuk larutan 100 ppm digunakan larutan 200 ppm yang telah dibuat dengan konsentrasi 50% + 50% yaitu 500 ml larutan IAA + 500 ml aquades.
Persiapan media tanam dan penanaman yaitu media tanam yang digunakan tanah top soil dan kompos.  Tanah  dan  kompos  terlebih  dahulu  disterilkan.  Persiapan  kompos  dengan  5  kg  kompos ditambahkan  500  ml  larutan  bakteri  pelarut  fosfat  dan  kalium,  diinkubasi  selama  21  hari  atau  3 minggu  pada  kondisi  lingkungan  yang  lembap  dan  gelap.  Dua  hari  sekali  dilakukan  pembalikan kompos  untuk  menjaga  kelembaban  kompos.  Persiapan  tanah  dan  kompos  pada polybag dengan ukuran 15x20 cm.
Dalam  satu polybag berisi  1  kg  tanah  yang  ditambahkan  300  g  kompos  sesuai  perlakuan. Kompos  yang  di  perkaya  dengan  isolat  BPF  dan  BPK  diberi  lapisan  plastik  tambahan  untuk
menurunkan resiko kontaminasi pada polybag lain. Polybag di susun berdasarkan denah rancangan acak  kelompok  (RAK).  Penyediaan  bahan  tanam  vanili,  bibit  dipotong dengan  2  buku  dengan menyisakan satu daun pada buku teratas yaitu satu buku ditenggelamkan pada media tanam dan 1 buku bagian atas daun dipotong setengah untuk mengurangi penguapan. Penanaman tanaman vanili ke dalam polybag berisi satu setek batang vanili per polybag.
Aplikasi  perlakuan  IAA  dilakukan  pada  tanaman  berumur  3  minggu  setelah  tanam.  Hal  ini dilakukan  karena  masih  banyak  bibit  yang  disulam  pada  minggu  sebelumnya.  Aplikasi  IAA dilakukan dengan cara mempersiapkan larutan IAA berdasarkan konsentrasi yang telah ditentukan. Larutan IAA berdasarkan konsentrasi yang telah disiapkan disemprotkan pada bibit vanili seminggu sekali dengan menggunakan sprayer manual sebanyak 4 semprot dalam sekali perlakuan.
Pengamatan  dilakukan  pada  awal  pembibitan,  saat  pembibitan  dan  akhir  pembibitan  yang meliputi: panjang sulur (cm), jumlah daun (helai), jumlah akar adventif, panjang akar adventif (cm), volume akar adventif (m 3 ), dan bobot segar tanaman.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Dari hasil percobaan dengan pemberian ZPT IAA serta media tanam yang diperkaya dengan BPF dan BPK tidak diperoleh interaksi dari kedua perlakuan pada parameter pertumbuhan bibit setek vanili.  Pemberian  IAA  dengan  tiga  taraf  yang  berbeda  belum  memberikan  hasil  yang  lebih  baik dibandingkan dengan kontrol. Dalam hasil percobaan ini pengkayaan BPF dan BPK dalam media tanam  memerikan  pengaruh  pada  beberapa  variabel  pengamatan.  Hasil  percobaan  yaitu  sebagai berikut:

## 1. Panjang Sulur
Pemberian  IAA  sintetis  belum  memberikan  pengaruh  pada  panjang  sulur  bibit  vanili. Pemberian bakteri pelarut fosfat dan bakteri pelarut kalium memberikan pengaruh pada panjang sulur bibit vanili.  Peran BPF dan BPK  memberikan pengaruh terbaik  dengan rata-rata 160 cm dan  147,2  cm,  50%  lebih  baik  dibandingkan  dengan  kontrol.  hasil  percobaan  yang  telah dilakukan diperoleh rata-rata panjang sulur dengan pengaruh BPF dan BPK  dapat dilihat pada Gambar 1.
Gambar 1. Rata-rata panjang sulur bibit vanili akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
100,9 b 160,0 a 147,2 a 0,0 50,0 100,0 150,0 200,0 Kontrol BPF BPK P an jan g s u lu r (cm ) Perlakuan
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...
Isolat  BPF  dan  BPK  sebagai plant  growth  promoting  rhizobacteria (PGPR)  mampu mendukung  pertumbuhan  tanaman  melalui  berbagai  mekanisme.  PGPR  adalah  kelompok penting  dari  bakteri  yang  menguntungkan,  kolonisasi  akar  yang  tumbuh  subur  di  rizosfer tanaman  menunjukkan  interaksi  sinergis  dan  antagonis  dengan  mikrobiota  tanah  dan  terlibat dalam  berbagai  kegiatan  yang  penting  secara  ekologis  (Basu  et  al.,  2021).  PGPR  mampu menghasilkan hormon pertumbuhan yang dapat direspons dengan peningkatan tinggi tanaman. indole-3-acetic  acid  (IAA)  dapat  dihasilkan  oleh  bakteri Bacillus sp.  dimana  IAA  merupakan hormon jenis  auksin  untuk  proses  pemanjangan  sel  (Sarmiento-López  et al., 2022).  Ditunjang dengan  ketersediaan  air  dari  akar  adventif  maupun  akar  utama,  proses  pemanjangan  sel  akan berlangsung dengan maksimal pada vanili dengan media yang diperkaya BPF maupun BPK.

## 2. Jumlah Daun
Pemberian  IAA juga masih belum memberikan  pengaruh  pada jumlah daun  bibit  vanili. Sedangkan pemberian isolat bakteri pada media tanam memberikan pengaruh pada jumlah daun. Perlakuan bakteri pelarut kalium  dan bakteri pelarut fosfat  memiliki pengaruh lebih baik pada jumlah daun dengan rata-rata 32,3 dan 30,7 dibandingkan dengan kontrol. Dari hasil percobaan yang telah dilakukan diperoleh rata-rata jumlah daun, dapat dilihat pada Gambar 2.
Sejalan  dengan  tinggi  tanaman,  pengkayaan  BPF  dan  BPK  juga  berpengaruh  pada pertumbuhan vegetatif lainnya seperti jumlah daun. Jumlah daun akan bertambah seiring dengan berjambahnya jumlah ruas dalam sulur/batang vanili. Daun muncul sejajar pada tiap titik buku - buku  dalam  sulur  vanili  (Ramadhan  et  al . ,  2019).  Hormon  Eksogen  dari  PGPR  yang memungkinkan  dihasilkan  oleh Basilus  spp. adalah  kelompok  sitokinin  (Riaz  et  al.,  2021).
Sitokinin bertanggungjawab akan munculnya setiap tunas pada tanaman vanili.

## 3. Akar Adventif
Vanili memiliki 2 jenis akar yaitu akar yang muncul pada setiap buku-buku di batang atas (akar adventif) dan akar utama di dalam tanah. Berdasarkan hasil percobaan pengkayaan mikroba pada media tanam memberikan pengaruh pada jumlah akar adventif vanili. Jumlah akar adventif ini dihitung berdasarkan jumlah akar yang efektif yang berfungsi sebagai akar perekat dan akar yang  membantu  penyerapan  nutrisi  tanaman.  Perlakuan  bakteri  pelarut  kalium  dan  bakteri pelarut fosfat memberikan pengaruh lebih baik dibandingkan kontrol dengan rata-rata 28,7 dan
18,3 b 30,7 a 32,3 a 0,0 10,0 20,0 30,0 40,0 Kontrol BPF BPK Ju m lah d au n ( h elai) Perlakuan
Gambar 2. Rata-rata jumlah daun akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...
27,0. Dari hasil percobaan yang telah dilakukan diperoleh rata-rata jumlah akar adventif dengan pengaruh pemberian isolat mikroba dapat dilihat pada Gambar 3.
Gambar 3. Rata-rata jumlah akar adventif akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
Perlakuan pemberian IAA memberikan pengaruh pada rata-rata panjang akar batang atas dibandingkan perlakuan bakteri pelarut. Belum didapatkan interaksi dari kedua perlakuan pada rata-rata panjang akar batang atas. Pemberian IAA dengan 3 taraf yaitu 0, 100 ppm dan 200 ppm memberikan  pengaruh  terbaik  pada  perlakuan  200  ppm  dibandingkan  perlakuan  100  ppm maupun kontrol. Rata-rata panjang akar atas yang dihitung berdasarkan akar batang atas yang efektif hingga menembus tanah. Rata-rata panjang akar batang atas dengan pengaruh pemberian IAA  dapat dilihat pada Gambar 4.
Gambar 4. Rata-rata panjang akar adventif pada perlakuan IAA yang berbeda
16,7 b 27,0 a 28,7 a 0 10 20 30 40 Kontrol BPF BPK Ju m lah ak ar ad v en tif Perlakuan 26,0 b 15,4 c 41,7 a 0,0 10,0 20,0 30,0 40,0 50,0 60,0 IAA 0 mg/L IAA 100 mg/L IAA 200 mg/L P an jan g ak ar ad v en tif ( cm )
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...
Perlakuan  pemberian  IAA  dan  media  yang  diperkaya  isolat  mikroba  masing-masing memberikan  pengaruh  yang  signifikan  pada  panjang  akar  adventif.  Dari  kedua  perlakuan  masih belum  didapatkan  interaksi  pengaruh  perlakuan  pada  variable  pengamatan  pada  volume  akar adventif. Perlakuan pemberian IAA dengan konsentrasi berbeda memberikan pengaruh terbaik pada konsentrasi 200 ppm dibandingan konsentrasi 100ppm dan kontrol. Sedangkan pengkayaan mikroba dalam media tanam memberikan pengaruh terbaik pada bakteri pelarut fosfat dibandingkan pelarut kalium dan kontrol. Hasil rata-rata volume akar batang atas oleh pemberian IAA dan bakteri pelarut dapat dilihat pada Gambar 5 dan Gambar 6.
Gambar 5. Rata-rata volume akar adventif akibat perlakuan IAA yang berbeda
Gambar 6. Rata-rata volume akar adventif akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
Proses  pembentukan  akar  tidak  lepas  dari  keberadaan  hormon  auksin  (Fantri,  2021). Sumber  auksin  berupa  IAA  sintetis  yang  diberikan  pada  tanaman  dengan  cara foliar  feeding menyebabkan pertumbuhan optimal pada akar adventif (Handayani et al., 2020). Namun, pada perlakuan IAA 100 ppm memiliki volume akar lebih rendah dibandingkan dengan IAA 200 ppm
4,0 b 2,2 c 6,1 a 0,0 2,0 4,0 6,0 8,0 IAA 0 ppm IAA 100 ppm IAA 200 ppm Vo lu m e ak ar ad v en tif ( m l) Perlakuan 2,6 b 5,6 a 4,2 a 0,0 2,0 4,0 6,0 8,0 Kontrol BPF BPK Vo lu m e ak ar ad v en tif ( m l)
kemungkinan  disebabkan  konsentrasi  yang  kurang  optimal.    Gambar  5  terlihat  bahwa  terjadi penurunan volume akar pada perlakuan auksin 100 ppm hal ini dapat dijelaskan oleh penelitian Ivanchenko  et  al . (2010)  yaitu  efek  perubahan  bentuk  alami  auksin  dari  asam  indole-3-asetat (IAA) pada inisiasi akar lateral secara bertahap berkurang dengan penghambatan pemanjangan sel akar  tanaman.  Penghambatan  IAA  pada tingkat yang lebih tinggi  dalam  bagian akar  dapat dilihat dengan terjadinya pengurangan jumlah dan panjang sel.

## 4. Akar Utama
Hasil  percobaan  berdasarkan  perlakuan  yang  diberikan  tidak  memberikan  interaksi  dari pemberian  IAA  dengan  isolat  bakteri,  baik  pada  jumlah  akar,  panjang  akar  dan  volume  akar utama  pada  vanili.  Pemberian  IAA  sintetis  secara foliar  feeding belum  memberikan  pengaruh pada parameter tersebut. Pemberian bakteri pelarut kalium memberikan pengaruh pada jumlah akar dalam tanah dibandingkan perlakuan bakteri pelarut fosfat dan kontrol. Walaupun pada rata - rata jumlah akar dalam tanah pada pemberian pelarut kalium dan bakteri pelarut fosfat memiliki selisih  yang  sedikit.  Rata-rata  jumlah  akar  dalam  tanah  yang  dipengaruhi  oleh  bakteri  pelarut dapat dilihat pada Gambar 7.
Gambar 7. Rata-rata jumlah akar dalam tanah akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
Pengayaan isolat BPF dan BPK juga memberikan pengaruh pada panjang akar dalam tanah pada pembibitan vanili. Pemberian BPF dan BPK memberikan pengaruh terbaik pada panjang akar maupun volume akar dalam tanah dibandingkan dengan kontrol. Rata-rata panjang dan volume akar dalam tanah yang dipengaruhi bakteri pelarut dapat dilihat pada  Gambar 7 dan 8. Penelitian yang dilakukan oleh Biswas et al. (2018) menyatakan bahwa bakteri pelarut kalium mampu menghasilkan fitohormon  pada  zona  perakaran.  Begitu  juga  dengan  bakteri  pelarut  forfat,  hasil  penelitian  oleh Kadmiri  et  al.  (2018)  menunjukkan  bahwa  dalam  kondisi  salin,  BPF  masih  dapat  menghasilkan fotohormon  dalam  bentuk  auksin.  Dimana  dalam  regulasinya  fitohormon  bertanggungjawab  akan pertumbuhan  meristem  apikal  oleh  tanaman  (Shi  &  Vernoux,  2022).  Proses  pembentukan  akar diinduksi oleh hormon spesifik terutama auksin. Setek tanaman vanili pada dasarnya sama dengan beberapa  tanaman  lainnya.  Secara  molekuler  gen  yang  bertanggungjawab  dalam  proses  signaling auksin yaitu TIR1/AFB2-Aux/IAA (Lakehal et al., 2019). Secara molekular dan fisiologis bagaimana alokasi fitohormon dalam proses pembentukan akar pada setek tanaman dapat dijelaskan pada artikel
16,0 b 27,7 a 28,0 a 0,0 10,0 20,0 30,0 40,0 Kontrol BPF BPK Ju m lah ak ar Perlakuan
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...
(Druege et al., 2019). Dalam tanaman vanili terbukti bahwa pengayaan isolat mikroba sebagai PGPR terindikasi  dapat  menghasilkan  fitohormon  dalam  bentuk  auksin  sehingga  mendukung  proses pembentukan akar dengan peningkatan jumlah, volume dan panjang akar.
Gambar 8. Rata-rata panjang akar dalam tanah akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
Gambar 9. Rata-rata volume akar dalam tanah akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
Jumlah, panjang, dan volume akar utama pada faktor perlakuan dengan IAA sintetis tidak signifikan kemungkinan disebabkan lamanya transport auksin menuju perakaran dibawah tanah. Menurut  (Nakamura  et  al.,  2019)  transport  auksin  pada  dasarnya  menggunakan  mekanisme gravitropisme menuju  bagian bawah (akar)  namun terdapat  gap  antara transport auksin secara amiloplas  dan  secara  gravitropisme  langsung.  Hal  ini  kemungkinan  disebabkan  oleh  adanya kelompok gen LAZY1 yang telah diidentifikasi pada arabidopsis.

## 5. Bobot Segar
Kombinasi perlakuan pengkayaan media tanam dengan mikroba dan pemberian IAA sintetis belum  menunjukkan  interaksi  pada  bobot  segar  bibit  vanili.  Pemberian  perlakuan  bakteri  pelarut fosfat dan bakteri pelarut kalium memberikan pengaruh terbaik dengan nilai rata-rata 156,4 g dan 167,5 g, lebih baik dibandingkan dengan kontrol. Rata-rata bobot segar bibit vanili yang dipengaruhi
55,9 b 96,2 a 111,4 a 0,0 40,0 80,0 120,0 160,0 Kontrol BPF BPK P an jan g ak ar ( cm ) Perlakuan 4,0 b 6,4 a 7,1 a 0,0 2,0 4,0 6,0 8,0 10,0 Kontrol BPF BPK Vo lu m e ak ar ( m l) Perlakuan
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...
oleh pengkayaan mikroba pada media tanam dapat dilihat pada Gambar 10. Semakin bertambahnya panjang sulur, jumlah daun dan beberapa parameter akar akan berimbas pada bobot segar tanaman. Hal tersebut disebabkan proses pemanjangan dan pelebaran tanaman peningkatan volume dan jumlah sel  (Adugna  et  al . ,  2015)  sehingga  terdapat  peningkatan  biomassa  yang  ditunjukkan  dengan perbedaan bobot segar tanaman.
Gambar 10. Rata-rata bobot segar bibit vanili akibat pemberian isolat bakteri yang berbeda
Perlakuan  IAA  sintetis  pada  konsentrasi  100  ppm  hingga  200  ppm  belum  memberikan pengaruh pada bobot segar yang menunjukkan biomassa tanaman. Hal ini kemungkinan disebabkan oleh konsentrasi yang diberikan terlalu rendah. Hasil penelitian Babu et al. (2018) pada setek pohon Arjun  menggunakan  auksin  sintetis  sebesar  1000  mg.l -1 (1000  ppm)  sebagai  perlakuan  terbaik. Penelitian  Tien  et  al.  (2020)  juga  menggunakan  IAA  sintetis  pada  setek  tanaman Solanum procumbens ,  namun  konsentrasi  yang  digunakan  juga  jauh  lebih  tinggi  dengan  rentang  500-2000 ppm.  Hasil  penelitian  ini  dapat  digunakan  sebagai  acuan  bahwa  dalam  penelitian  selanjutnya mengenai  setek  tanaman  vanili  menggunakan  IAA  sebagai  hormon  eksternal  disarankan menggunakan  konsentrasi  di  atas  200  ppm  (mg.l -1 ).  Dapat  dilihat  pada  hasil  penelitian  ini penggunakan  konsentrasi  tertinggi  200  ppm  hanya  berpengaruh  pada  parameter  volume  akar adventif.

## KESIMPULAN
Kombinasi pemberian zat pengatur tumbuh IAA  sintetis dan media yang diperkaya BPF maupun  BPK  tidak  berpengaruh  pada  semua  variabel  pengamatan.  Secara  tunggal,  pemberian IAA  sintetis  berpengaruh  pada  parameter  panjang  dan  volume  akar  adventif  yang  efektif membantu  menyuplai  unsur  hara  dengan  perlakuan  terbaik  pada  konsentrasi  200  ppm. Pengkayaan media dengan isolat bakteri pelarut fosfat (BPF) dan bakteri pelarut kalium (BPK) memberikan  pengaruh  lebih  baik  dibanding  kontrol  pada  pengamatan  panjang  sulur,  jumlah daun, jumlah akar adventif dan akar utama, panjang akar adventif dan akar utama, volume akar adventif dan akar utama, serta bobot segar bibit vanili.
124,8 b 156,4 a 167,5 a 0,0 50,0 100,0 150,0 200,0 Kontrol BPF BPK B o b o t seg ar ( g ) Perlakuan
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...

## UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan  terima  kasih  disampaikan  kepada  Lembaga  penelitian  dan  pengabdian  LP2M Universitas Jember yang telah mendanai seluruh kegiatan penelitian dengan judul tersebut.

## DAFTAR PUSTAKA
Adugna, M., Belew, D., & Tilahun, D. (2015). Influence of rooting media and number of nodes per stem cutting on nursery ... mesay adugna. Journal of Horticulture and Forestry , 7 (3), 48–56. https://doi.org/10.5897/JHF2014.0376
Ali, M. R., Rusmarini, U. K., & Setyowati, E. R. (2017). Pengaruh macam zat pemacu pertumbuhan dan  pupuk  organik  terhadap  pertumbuhan  awal  bibit  kelapa  sawit  di  pre  nursery. Jurnal Agromat. 2 (1), 1-16.
Babu, B. H., Larkin, A., & Kumar, H. (2018). Effect of plant growth regulators on rooting behavior of stem cuttings of Terminalia arjuna (ROXB.). Plant Archives , 18 (2), 2159-2164.
Badan Pusat Statistik. (2012). Data luas areal tanaman perkebunan rakyat menurut jenis tanaman. diakses  dari  https://www.bps.go.id/indicator/54/770/3/luas-areal-tanaman-perkebunan-rakyat- menurut-jenis-tanaman.html. di akses pada tanggal 20 Desember 2021 pada pukul 21.25 WIB.
Badan Pusat Statistik. (2014). Data produksi perkebunan rakyat menurut jenis tanaman. diakses dari https://www.bps.go.id/indicator/54/768/3/produksi-perkebunan-rakyat-menurut-jenis- tanaman.html. di akses pada tanggal 20 Desember 2021 pada pukul 21.17 WIB.
Basu, A., Prasad, P., Das, S. N., Kalam, S., Sayyed, R. Z., Reddy, M. S., & Enshasy, H. El. (2021). Plant  growth  promoting  rhizobacteria  (PGPR)  as  green  bioinoculants:  recent  developments, constraints, and prospects. Sustainability , 13 (3), 1140. https://doi.org/10.3390/SU13031140
Biswas,  S.,  Shivaprakash,  M.  K.,  &  Maina,  C.  C.  (2018).  Biosynthesis  of  phytohormones  by potassium  solubilising  bacteria  isolated  from  banana  rhizosphere. International  Journal  of Agriculture, Environment and Biotechnology , 11 (3), 497-501.
Druege, U., Hilo, A., Pérez-Pérez, J. M., Klopotek, Y., Acosta, M., Shahinnia, F., ... & Hajirezaei, M. R. (2019). Molecular and physiological control of adventitious rooting in cuttings: phytohormone action meets resource allocation. Annals of Botany , 123 (6), 929-949.
Fantri, M. (2021). Pengaruh panjang rizoma dan aplikasi ZPT nabati terhadap pertumbuhan tanaman rami ( Boehmeria nivea L. Gaud). Retrieved from https://sipora.polije.ac.id/id/eprint/9286
Gupitasari. T. P., Noli, Z. A., & Suwirman. (2019). Induksi akar dan pertumbuhan setek pucuk jirak (Eurya acuminate DC .) dengan pemberian zat pengatur tumbuh IBA, NAA, IAA pada berbagai media tanam. Metaformosa: Journal of Biological Sciences. 6 (2), 268-275.
Hadipoentyanti,  E., &  Udarno,  L.  (1982). Botani  Panili  dalam  Monograf  Panili. Balai  Penelitian Tanaman Rempah dan Obat.
Handayani, E., Palupi, T., Fadjar, D., Tingkat, R., Pertumbuhan, K., Lada, S., & Rianto, F. (2020). Tingkat  keberhasilan  pertumbuhan  setek  lada  dengan  aplikasi  naungan  dan  berbagai  hormon tumbuh auksin. Agrovigor: Jurnal Agroekoteknologi , 13(2), 106–111.
https://doi.org/10.21107/AGROVIGOR.V13I2.6709
Hoesen, D., Hazar, S., Priyono, & Sumarnie, H. (2000). Peranan zat pengatur tumbuh IBA, NAA dan  IAA  pada  perbanyakan  amarilis merah  ( Amaryllidaceae). Prosiding Seminar  Hari  Cinta Puspa dan Satwa Nasional. Lab. Treub Laitbang Botani Puslitbang Biologi. LIPI: Bogor.
Isnaini. (2006). Pertanian Organik. Kreasi Wacana.
Ivanchenko, M. G., Napsucialy‐Mendivil, S., & Dubrovsky, J. G. (2010). Auxin‐induced inhibition of lateral root initiation contributes to root system shaping in Arabidopsis thaliana. The Plant Journal , 64(5), 740-752.
Jamaludin, J., & Ranchiano, M. G. (2021). Pertumbuhan tanaman vanili ( Vanilla planifolia ) dalam polybag  pada  beberapa  kombinasi  media  tanam  dan  frekuensi  penyiraman  menggunakan teknologi irigasi tetes. Jurnal Agro Industri Perkebunan , 9 (2), 65-72. https://doi.org/10.25181/jaip.v9i2.1867
Kadmiri,  I.  M.,  Chaouqui, L.,  Azaroual,  S.  E.,  Sijilmassi,  B.,  Yaakoubi,  K.,  & Wahby,  I.  (2018). Phosphate-solubilizing  and  auxin-producing  rhizobacteria  promote  plant  growth under saline conditions. Arabian Journal for Science and Engineering , 43 (7), 3403-3415.
Lakehal, A., Chaabouni, S., Cavel, E., Le Hir, R., Ranjan, A., Raneshan, Z., ... & Bellini, C. (2019). A  molecular  framework  for  the  control  of  adventitious  rooting  by  TIR1/AFB2-Aux/IAA- dependent auxin signaling in Arabidopsis . Molecular Plant , 12 (11), 1499-1514.
Laviendi,  A.,  Ginting,  J., &  Irsal.  (2017).  Pengaruh perbandingan media  tanam  kompos  kulit  biji kopi dan pemberian pupuk NPK (15:15:15) terhadap pertumbuhan bibit kopi ( Coffea arabica L.) di rumah kaca. Jurnal Agroteknologi FP USU , 5 (1), 72-77.
Nakamura, M., Nishimura, T., & Morita, M. T. (2019). Bridging the gap between amyloplasts and directional  auxin transport in  plant  gravitropism. Current  Opinion  Plant  Biology , 52 ,  54–60. https://doi.org/10.1016/J.PBI.2019.07.005
Ramadhan, M., Setyorini, E., Rachmawati, N., & Andriati, E. (2019). Ayo Berkebun Vanili. Jakarta:
Kementerian Pertanian. Retrieved from http://repository.pertanian.go.id/handle/123456789/9280
Rao, N. S. (1994). Mikroorganisme Tanah dan Pertumbuhan Tanaman . Edisi Kedua. UI-Press
Riaz, U., Murtaza, G., Anum, W., Samreen, T., Sarfraz, M., & Nazir, M. Z. (2021). Plant growth- promoting  rhizobacteria  (PGPR)  as  biofertilizers  and  biopesticides. Microbiota  and Biofertilizers , 181–196. https://doi.org/10.1007/978-3-030-48771-3_11
Ruhnayat. A. (2003). Bertanam Vanili Si Emas Hijau Nan Wangi . Agromedia Pustaka.
Sarmiento-López,  L.,  Quiroz-Figueroa,  F.  R.,  Sepúlveda-Jiménez,  G.,  &  Rodríguez-Monroy,  M.
(2022). Production of indole-3-acetic acid by Bacillus circulans E9 in a low-cost medium in a bioreactor.
Journal of Bioscience and Bioengineering . Retrieved from https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1389172322000858
Setiawati,  T.  C.,  &  Mutmainnah,  L.  (2016).  Solubilization  of  potassium  containing  mineral  by microorganisms from sugarcane rhizosphere. Agriculture and Agricultural Science Procedia , 9 , 108-117.
Shi,  B.,  &  Vernoux,  T.  (2022).  Hormonal  control  of  cell  identity  and  growth  in  the  shoot  apical meristem. Current Opinion in Plant Biology , 65 , 102111.
Kusbianto: Pengaruh Pemberian IAA pada Pembibitan Setek ...
Sudarmini, D. P., Sudana. I. M., Sudiarta, I. P., & Suastika, G. (2018). Pemanfaatan bakteri pelarut fosfat penginduksi hormone IAA ( indol acetic acid) untuk peningkatan pertumbuhan kedelai (Glycine max). Jurnal Agric. Sci. and Biotechnol. 7 (1), 1-12
Syavitri, D. A., Prayogo, C., & Gunawan, S. (2019). Pengaruh pupuk hayati terhadap pertumbuhan tanaman, dan populasi bakteri pelarut kalium pada tanaman tebu ( Saccharum officinarum L.).
Jurnal Tanah dan Sumberdaya Lahan , 6 (2), 1341-1352.
Tien, L. H., Chac, L. D., Oanh, L. T. L., Ly, P. T., Sau, H. T., Hung, N., ... & Thinh, B. B. (2020). Effect  of  auxins  (IAA,  IBA  and  NAA)  on  clonal  propagation  of  Solanum  procumbens  stem cuttings. Plant Cell Biotechnology and Molecular Biology , 21 (55-56), 113-120.
Udarno,  L.,  &  Hadipoentyanti,  E.  (2009).  Panili  budidaya  dan  kerabat  liarnya. Pengembangan Tanaman Industrial , 15 (1), 27-28
Udia, B. A. A. A., Rusmin, D., Fatmawaty, A. A., Hermita, N., & Syukur, C. (2021). Mutu fisik dan fisiologis benih setek berkara vanili pada berbagai jenis media. Jurnal Kultivasi , 20 (2),
111-119. https://doi.org/10.24198/kultivasi.v20i2.32698