## ARTIKEL PENELITIAN
IDENTIFIKASI BAKTERI DAN RESISTENSINYA TERHADAP ANTIBIOTIK DI POLI GIGI RSUD dr. DORIS SYLVANUS PALANGKA RAYA
1 Susi Novaryatiin
1 Dosen Pengajar Program Studi D-III Farmasi, Fakultas Ilmu Kesehatan, Universitas Muhammadiyah Palangkaraya
e-mail : susi_novaryatiin@yahoo.com

## ABSTRAK
Rumah sakit  selain  merupakan tempat  untuk mendapatkan kesembuhan, namun juga merupakan sumber dari berbagai macam penyakit, terutama penyakit yang disebabkan oleh bakteri.   Bakteri  dapat   hidup   dan   berkembang  di   lingkungan  rumah  sakit,   seperti  air,  udara, lantai, makanan, dan benda-benda peralatan medis maupun non medis. Beberapa penyakit yang dapat ditularkan  di rumah sakitk hususnya  dalam pelayanan kesehatan gigi antara lain herpes simpleks, tuberkulosis, hepatitis B, AIDS, sifilis, campak, dan infectious mononucleids. Penemuan   antibiotik   membawa   dampak   besar   pada   pelayanan   kesehatan   dan penyembuhan infeksi bakteri.  Akan tetapi, saat ini pola penggunaan beberapa antibiotic telah berlebihan dan tidak tepat. Hal ini dapat menyebabkan terjadinya resistensi bakteri terhadap antibiotik.
Penelitian ini  bertujuan untuk  mengetahui bakteri apa saja yang terdapat di Poli Gigi RSUD   dr.   Doris   Sylvanus   Palangka   Raya   dan   untuk   mengetahui   resistensi   bakteri   yang ditemukan terhadap antibiotik yang digunakan di Poli Gigi RSUD dr. Doris Sylvanus Palangka Raya.
Penelitian   ini   dilakukan   di   Laboratorium   Mikrobiologi   Fakultas   Ilmu   Kesehatan Universitas   Muhammadiyah   Palangkaraya.   Kegiatan   penelitian   yang   dilakukan   adalah pengambilan sampel, isolasi bakteri, identifikasi bakteri, dan uji resistensi antibiotik.
Pada penelitian ini  telah berhasil diisolasi dan diidentifikasi bakteri Staphylococcus sp. dan E. coli dari Poli Gigi RSUD dr. Doris Sylvanus Palangka Raya.  Baik Staphylococcus sp. maupun E.   coli menunjukkan   sensitivitas   yang   baik   terhadap   ketiga   antibiotik   yang   sering digunakan   di   Poli   Gigi   RSUD   dr.   Doris   Sylvanus   Palangka   Raya. Staphylococcus sp. menunjukkan   sensitivitas   yang   tinggi   terhadap   cefadroxil,   diikuti   oleh   clindamycin   dan amoxicilin. Sedangkan E. coli menunjukkan sensitivitas yang tinggi terhadap clindamycin, diikuti oleh amoxicilin dan cefadroxil.
Kata Kunci: identifikasi   bakteri,   resistensi   antibiotik, Staphylococcus sp., E.   coli, Poli   Gigi RSUD dr. Doris SylvanusPalangka Raya.

## PENDAHULUAN
Rumah   sakit   merupakan   tempat dimana   orang   yang   sakit   dirawat   untuk mendapatkan   terapi   dan   perawatan   agar dapat   sembuh.   Namun,   disamping   untuk mencari   kesembuhan,   rumah   sakit   juga merupakan   sumber   dari   berbagai   macam
penyakit,   terutama   penyakit   yang disebabkan   oleh   bakteri.   Bakteri   dapat hidup dan berkembang di lingkungan rumah sakit,   seperti   air,   udara,   lantai,   makanan, dan benda-benda peralatan medis maupun non medis. Udara dari dalam ruangan dapat bertindak sebagai reservoir bakteri patogen
Jurnal Surya Medika Volume 1 No. 2 [2016]
17

## Susi Novaryatiin
yang ditularkan oleh pasien, sehingga dapat menyebabkan   terjadinya   infeksi   (Noer, 2012).
Infeksi   baru   yang   diperoleh   dari rumah   sakit   dan   sebelumnya   tidak   dalam masa   inkubasi   dari   penyakit   tersebut, inilahyang   disebut   dengan   infeksi nosokomial (Kusmawan, 2008). Di negara- negara   berkembang,   kejadian   infeksi nosokomial   tinggi   disebabkan   karena kurangnya pengawasan, praktik pencegahan infeksi yang buruk, pemakaian sumber   terbatas   yang   tidak   tepat,   dan rumah   sakit   yang   penuh   sesak   (Irianto, 2013).
Tindakan perawatan di poli gigi yang beresiko   terhadap   penularan   penyakit antara   lain   berupa   tindakan   pencabutan gigi, pembersihan karang gigi, pengasahan gigi   terutama   di   daerah   servikal   (daerah yang berbatasan dengan gusi), insisi, serta tindakan lain yang dapat menimbulkan luka. Beberapa   penyakit   yang   dapat   ditularkan dalam pelayanan kesehatan gigi antara lain herpes   simpleks,   tuberkulosis,   hepatitis   B, AIDS,   sifilis,   campak,   dan infectious mononucleids (Kusmawan, 2008).
Penemuan   antibiotik   membawa dampak   besar   pada   pelayanan   kesehatan dan penyembuhan infeksi bakteri. Menurut Waluyo (2008), secara klinis antibiotik yang baik   mempunyai   sifat   membunuh   bakteri yang bersifat patogen tanpa merusak inang, bakterioside, tidak menyebabkan resistensi
bakteri,   berspektrum   luas,   dan   tidak alergenik dalam jangka waktu penggunaan yang lama.
Di   Indonesia,   antibiotik   yang   cukup dominan   digunakan   yaitu   tetrasiklin, penisilin,   kloramfenikol,   eritromisin,   dan streptomisin. Tidak berbeda dengan negara lain,   pola   penggunaan   antibiotik   tersebut telah   berlebihan   dan   banyak   diantaranya digunakan   secara   tidak   tepat.   Hal   ini menyebabkan   terjadinya   resistensi   bakteri terhadap antibiotik (Hadinegoro, 1999).
Berdasarkan latar belakang di atas, maka   perlu   dilakukan   penelitian   terhadap pola   bakteri   dan   resistensinya   terhadap antibiotik   di   Poli   Gigi   RSUD   dr.   Doris Sylvanus. Diharapkan hasil penelitian dapat dijadikan   pertimbangan   dalam   pedoman pemberian   antibiotik   di   rumah   sakit, khususnya di poli gigi.
Penelitian   ini bertujuan   untuk mengetahui bakteri apa saja yang terdapat di   Poli   Gigi   RSUD   dr.   Doris   Sylvanus Palangka   Raya   dan   untuk   mengetahui resistensi bakteri yang ditemukan terhadap antibiotik yang digunakan di Poli Gigi RSUD dr. Doris Sylvanus Palangka Raya.

## METODE PENELITIAN
Penelitian   ini   dilakukan   di Laboratorium   Mikrobiologi   Fakultas   Ilmu Kesehatan   Universitas   Muhammadiyah Palangkaraya.   Penelitian   dilaksanakan selama 4 (empat) bulan dimulai dari sejak
18

## Susi Novaryatiin
penelitian   ini   disetujui   oleh   LP2M   UM Palangkaraya.  Kegiatan   penelitian   yang dilakukan   adalah  pengambilan   sampel, isolasi   bakteri,   identifikasi   bakteri,   dan   uji resistensi antibiotik.

## Sampel Penelitian
Sampel   penelitian   adalah   air   dan udara   ruang   di   Poli   Gigi   RSUD   dr.   Doris Sylvanus   Palangka   Raya.   Sampel   air diambil   sebanyak   100   ml   dengan menggunakan   botol   sampel   steril.   Untuk pengambilan   sampel   bakteri   udara   ruang diambil   pada   3   (tiga)   tempat   yang membentuk   garis   diagonal   (pada saturuangan)   yaitu   1   (satu)   di   sudut,   1 (satu)   di   tengah,   dan   1   (satu)   di   sudut. diambil pada 3 (tiga) titik yaitu 2 (dua) titik pada sudut ruangan dan 1 (satu) titik pada tengah ruangan.

## Isolasi Bakteri
Bakteri yang tumbuh pada media NA kemudian   ditumbuhkan   pada   media   BHI, diinkubasi pada suhu 37 °C selama 24 jam pada   inkubator.   Lalu   ditumbuhkan   pada media diferensial antara lain media EMBA dan media Blood Agar. Penumbuhan bakteri dari media BHI ke media diferensial dapat dilakukan   dengan   cara   goresan.   Inkubasi dilakukan   pada   suhu  37   °C  selama  18-24 jam (Hadioetomo, 1993).

## Identifikasi Bakteri
Isolat   bakteri   yang   diperoleh   lalu dikultur,   kemudian   diidentifikasi   untuk menentukan pola bakteri. Identifikasi bakteri
dilakukan   berdasarkan   sifat-sifat   bakteri dengan   menggunakan   pewarnaan   gram (Hadioetomo,   1993).Amati   preparat   di bawah mikroskop.

## Uji Resistensi Antibiotik
Uji   resistensi   antibiotik   dilakukan dengan   metode   Kirby   Bauer   (Koneman et.al., 1988),   dengan   menggunakan   media MHA.Beberapa   koloni   bakteri   yang   sudah ditumbuhkan selama 24 jam diambil untuk disuspensikan ke dalam 0,5 ml BHI cair, lalu diinkubasi pada suhu 37 °C selama 5-8 jam. Suspensi   di   atas   ditambah   aquades   steril hingga   kekeruhan   tertentu   sesuai   dengan standar Mac Farlan konsentrasi bakteri 108 CFU per ml.
Kapas lidi steril dicelupkan ke dalam suspensi   bakteri   lalu   ditekan-tekan   pada dinding   tabung   hingga   kapasnya   tidak terlalu   basah,   kemudian   dioleskan   pada permukaan media agar hingga merata. Disk antibiotik   diletakkan   di   atas   media   agar yang   telah   diolesi   bakteri,   kemudian diinkubasi pada suhu 37 °C selama 18-24 jam.   Daerah   hambatan   antibiotik   terhadap pertumbuhan   bakteri   diukur   menggunakan penggaris dengan satuan mm.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Isolasi Bakteri
Pengambilan   sampel   pada   ruangan   Poli Gigi   BLU   RSUD   dr.   Doris   Sylvanus Palangka   Raya   menghasilkan   sebanyak   4 sampel.   Pengambilan   sampel   dapat diuraikan pada Tabel 1 berikut.
Jurnal Surya Medika Volume 1 No. 2 [2016]
19
Tabel 1. Hasil Pengambilan Sampel Sampel Jumlah Sampel Kode Udara Air 3 1 U1, U2, U3 A Total 4
Dari   keempat   sampel   yang   diambil, semuanya   tumbuh   pada   media   NA. Selanjutnya   bakteri   yang   tumbuh   tersebut ditumbuhkan   pada   media   BHI,   lalu ditumbuhkan   pada   media   diferensial.   Media diferensial yang digunakan yaitu media EMBA dan media Blood Agar .
Media   EMBA   merupakan   media   diferensial yang   digunakan   untuk   deteksi   dan   isolasi pathogen Gram negatif usus ( fecal bacteria ).
Mikroba   yang   memfermentasi   laktosa menghasilkan   koloni   ungu   gelap   dengan kemilau hijau metalik, sedangkan mikroba lain yang dapat tumbuh koloninya tidak berwarna. Pada   penelitian   ini   diamati   adanya pertumbuhan   bakteri   pada   media   EMBA, yang   berasal   dari   sampel   air.   Koloni   yang tumbuh berwarna ungu gelap dengan kemilau hijau metalik yang tidak terlihat (Gambar 1).
Gambar 1. Pertumbuhan bakteri pada media EMBA (kanan) dan media Blood Agar (kiri).
Media Blood   Agar digunakan   untuk deteksi   dan   isolasi   bakteri   berdasarkan kemampuannya   untuk   melisiskan   sel-sel darah   merah.   Ketiga   sampel   udara   pada penelitian   ini   menunjukkan   adanya pertumbuhan bakteri pada media Blood Agar . Tidak adanya zona hemolisis yang terbentuk menunjukkan   bahwa   bakteri   yang   tumbuh
bukan   merupakan Streptococcus sp. (Gambar 1).

## Identifikasi Bakteri
Hasil pengamatan pewarnaan Gram di bawah   mikroskop   diperoleh   1   bakteri   Gram positif   dan   1   bakteri   Gram   negatif.  Bakteri Gram positif tampak berwarna ungu tua dan berbentuk   bulat   bergerombol.   Warna   ungu
Jurnal Surya Medika Volume 1 No. 2 [2016]
20

## Susi Novaryatiin
dihasilkan   akibat   mempertahankan   zat pewarna   kristal   violet.   Sedangkan   bakteri Gram negatif   tampak berbentuk  batang  dan berwarna   merah   akibat   kehilangan
zatpewarna kristal violet. Perbedaan warna ini disebabkan   oleh   perbedaan   dalam   struktur kimiawi dinding sel bakteri (Pelczar dan Chan, 2007).
Gambar 2. Pewarnaan Gram Staphylococcus sp. (kiri) dan E. coli (kanan)
Berdasarkan   pertumbuhan   bakteri pada   media   diferensial   dan   pengamatan morfologi   dengan   pewarnaan   Gram,   maka bakteri   Gram   positif   diidentifikasi   sebagai Staphylococcus sp. (Gambar   2). Staphylococcus adalah   bakteri   Gram   positif yang menghasilkan pigmen emas dan putih, bersifat   aerob   fakultatif,   tidak   menghasilkan spora   dan   tidak   motil,   umumnya   tumbuh berpasangan maupun   berkelompok, berbentuk bulat dengan diameter sekitar 0,8- 1,0 µm (Adam, 1992 dan Brooks, 2007).
Sedangkan bakteri Gram negatif yang berhasil   diisolasi   pada   penelitian inidiidentifikasi   sebagai Eschericia   coli ( E. coli )   (Gambar   2). E.   coli merupakan   bakteri gram negatif yang termasuk ke dalam famili
Enterobacteraceae, bersifat   anaerob fakultatif,   berbentuk   batang. E.   coli hidup dalam jumlah besar di dalam usus manusia, yaitu membantu sistem pencernaan manusia dan melindunginya dari bakteri patogen, dan biasanya   ditemukan   dalam   jumlah   kecil sebagai   flora   normal   dalam   saluran pernafasan dan sistem alat kelamin (Jawetz et al., 2008).

## Uji Resistensi Antibiotik
Uji   resistensi   terhadap   bakteri   yang diisolasi   dari   Poli   Gigi   RSUD   dr.   Doris Sylvanus   Palangka   Raya   dilakukan   dengan menggunakan   3   (tiga)   jenis   antibiotik   yang umum   digunakan   di   poli   gigi   tersebut. Antibiotik   yang   digunakan   antara   lain amoxicilin,   cefadroxil,   dan   clindamycin dengan beberapa variasi konsentrasi.
Jurnal Surya Medika Volume 1 No. 2 [2016]
21
Jumlah isolat E.coli untuk dilanjutkan dengan uji resistensi yaitu sebanyak 1 isolat dan   1   isolat   untuk Staphylococcus sp. , sedangkan sebanyak 2 isolat Staphylococcus sp.(kode U1 dan U2) tidak disertakan dalam
pengujian   resistensi   terhadap   antibiotika karena   jumlah   isolat   yang   sedikit, sehinggadikhawatirkan   akan   terjadi   bias dalam pengambilan kesimpulan.
Tabel 2. Uji Resistensi Bakteri Staphylococcus sp.dan E. coli Terhadap Antibiotik Bakteri Staphylococcus sp. E. coli Diameter Zona Hambat (mm) Keterangan Diameter Zona Hambat (mm) Keterangan Jenis Antibiotik Amoxicilin 1% Amoxicilin 5% Amoxicilin 10%
Clindamycin 1% Clindamycin 5%
Clindamycin 10% Cefadroxil 1% Cefadroxil 5% Cefadroxil 10% 38,47 43,31 58,65 42,8 52,43 60,16 40,69 53,02 62,71 Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif 24,56 35,42 41,93 79,12 86,19 89,93 20,73 29 33,89 Intermediet Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif Sensitif Intermediet Intermediet
Sensitif
Baik E.coli maupun Staphylococcus sp.menunjukkan   sensitivitas   yang   baik terhadap   ketiga   jenis   antibiotik   yang   diuji (Tabel   2). E.coli menunjukkan   sensitivitas yang paling tinggi terhadap clindamycin yang ditunjukkan   dengan   diameter   zona   hambat sebesar   79,12   mm   pada   konsentrasi clindamycin 1%, 86,19 mm pada konsentrasi clindamycin   5%,   dan   89,93   mm   pada konsentrasi   clindamycin   10%   (Gambar   3). Clindamycin merupakan antibiotika golongan lincosamide   yang  dapat   bekerja   sebagai bakteriostatik maupun bakterisid tergantungkonsentrasi   obat   pada   tempat
infeksi   dan   organisme   penyebab   infeksi. Clindamycin   merupakan   suatu   antibiotik berspektrum   luas,   memiliki   kepekaan terhadap   bakteri   Gram   positif   aerobik ( Staphylococcus dan Streptococcus ),   bakteri Gram   negatif   anaerobik   berbentuk   batang ( Bacteroides, Fusobacterium, dan Prevotella ) serta   bakteri Staphylococcus yang   resisten terhadap metisilin (MRSA).  Mekanisme kerja clindamycin   adalah   menghambat   sintesa protein   bakteri   dengan   mengikat   subunit ribosom 50S yang menghambat terbentuknya ikatan peptida (Sukandar dkk., 2008).
Gambar 3. Uji resistensi bakteri E. coli terhadap antibiotik amoxicilin (kiri), cefadroxil (tengah), dan clindamycin (kanan) dengan beberapa konsentrasi yaitu 1%, 5%, dan 10%.
Gambar 4. Uji resistensi bakteri Staphylococcus sp.terhadap antibiotik amoxicilin (kiri), cefadroxil (tengah), dan clindamycin (kanan) dengan beberapa konsentrasi yaitu 1%, 5%, dan
10%.
Staphylococcus sp. menunjukkan sensitivitas   yang   sama   baiknya   terhadap clindamycin dan cefadroxil (Gambar 4). Hal ini ditunjukkan   dengan   diameter   zona   hambat yang   terbentuk   pada   uji   resistensi   dengan menggunakan   clindamycin   konsentrasi   1%, 5%,   dan   10%   yaitu   masing-masing   sebesar 42,8 mm; 52,43 mm; dan 60,16 mm. Pada uji resistensi   dengan   menggunakan   cefadroxil konsentrasi 1%, 5%, dan 10%, diameter zona hambat yang terbentuk yaitu masing-masing sebesar 40,69 mm; 53,02 mm; dan 62,71mm. Sensitivitas yang ditunjukkan E. coli terhadap cefadroxil lebih rendah dibandingkan dengan sensitivitas   yang   ditunjukkan   terhadap   dua antibiotik   lainnya.   Diameter   zona   hambat
yang terbentuk yaitu sebesar 20,73 mm pada konsentrasi   cefadroxil   1%,   29   mm   pada konsentrasi   cefadroxil   5%,   dan   33,89   mm pada   konsentrasi   cefadroxil   10%. Berdasarkan   diameter   zona   hambat   yang terbentuk   tersebut   menunjukkan   bahwa konsentrasi   cefadroxil   1%   dan   5%   bersifat intermediet   dalam   menghambat   aktivitas E. coli, namun sensitif pada konsentrasi 10%.
Cefadroxil   merupakan   antibiotika semisintetik   golongan   sefalosforin   generasi pertama. Cefadroxil bersifat bakterisid dengan jalan menghambat sintesa dinding sel bakteri. Yang   dihambat   ialah   reaksi   transpeptidase tahap   ketiga   dalam   rangkaian   reaksi pembentukan   dinding   sel.  Cefadroxil   aktif
terhadap Streptococcus beta-hemolytic,
Staphylococcus   aureus (termasuk   penghasil
enzim penisilinase), Streptococcus pneumoniae , E.   coli , Proteus   mirabilis , Klebsiella sp., Moraxella   catarrhalis (Sukandar   dkk.,   2008).   Hasil   uji   resistensi menunjukkan   bahwa   jika   dibandingkan dengan E.   coli,Staphylococcus sp.lebih sensitif   terhadap   cefadroxil.   Hal   ini   sesuai dengan   pustaka   bahwa   senyawa-senyawa generasi pertama memiliki aktivitas yang lebih baik   terhadap   organisme-organisme   Gram positif   dibandingkan   organisme-organisme Gram negatif (Katzung, 2004).
Sensitivitas   yang   ditunjukkan E.   coli terhadap   amoxicillin   jauh   lebih   baik   jika dibandingkan   dengan   cefadroxil.   Pada konsentrasi amoxicilin 1% terbentuk diameter zona   hambat   sebesar   24,56   mm,   hal   ini menunjukkan   bahwa   pada   konsentrasi tersebut amoxicilin bersifat intermediet dalam menghambat   aktivitas E.   coli. Sedangkan pada   konsentrasi   amoxicilin   5%   dan   10% terbentuk   diameter   zona   hambat   masing- masing   sebesar   35,42   mm   dan   41,93   mm. Staphylococcus sp.menunjukkan   sensitivitas yang cukup baik terhadap amoxicilin, namun sensitivitas   tersebut   lebih   rendah   jika dibandingkan   dengan   sensitivitas   yang ditunjukkan   terhadap   dua   antibiotik   lainnya. Pada   konsentrasi   amoxicilin   1%,   5%,   dan 10% terbentuk zona hambat dengan diameter
masing-masing   sebesar   38,47   mm;   43,31 mm; dan 58,65 mm.
Amoxicilin   merupakan   antibiotik   yang banyak   tersedia   pada   unit-unit   pelayanan kesehatan   masyarakat   terutama   puskesmas dan rumah sakit untuk pasien menengah ke bawah   sehingga   paling   banyak   dipakai (Refdanita et al., 2004). Amoxicilin merupakan antibiotik   spektrum   luas   yang   bersifat bakterisid.   Bakteri   pathogen   yang   sensitif terhadap   amoxicilin   adalah Staphylococci , Streptococci , Enterococci ,   dan E.   coli (Sukandar dkk., 2008), sehingga dapat dilihat dari hasil bahwa amoxicilin dapat membunuh bakteri E.coli dan Staphylococcus sp. Amoxicilin   merupakan   salah   satu   turunan penisilin   yang   bekerja   menghambat pembentukan dinding sel bakteri dengan cara mencegah   penggabungan   asam   N- asetimuramat yang dibentuk di dalam sel ke struktur   mukopeptide   yang   biasanya memberikan   bentuk   kaku   pada   dinding   sel bakteri (Pelczar dan Chan, 2007). Mekanisme kerja   amoxicilin   terhadap Staphylococcus aureus adalah   dengan   menghambat biosintesis   dinding   sel,   khususnya peptidoglikan (Lim, 1998) sedangkan pada E. coli apabila   diberikan   amoxicilin   akan membentuk   tonjolan-tonjolan   pada   dinding selnya   sehingga   sitoplasma   mengalir   di dalamnya.   Sel   akan   kehilangan sitoplasmanya   karena   lisis   (Pelczar   dan Chan, 2007).
Jurnal Surya Medika Volume 1 No. 2 [2016]
24

## KESIMPULAN
Kesimpulan   yang   didapat   dari penelitian ini adalah:
1. Telah   berhasil   diisolasi   dan   diidentifikasi bakteri Staphylococcus sp. dan E. coli dari Poli   Gigi   RSUD   dr.   Doris   Sylvanus Palangka Raya.
2. Baik Staphylococcus sp. maupun E. coli menunjukkan   sensitivitas   yang   baik terhadap   ketiga   antibiotik   yang   sering digunakan   di   Poli   Gigi   RSUD   dr.   Doris Sylvanus Palangka Raya.
3. Staphylococcus sp.   menunjukkan sensitivitas   yang   tinggi   terhadap cefadroxil,   diikuti   oleh   clindamycin   dan amoxicilin.
4. E.   coli menunjukkan   sensitivitas   yang tinggi   terhadap   clindamycin,   diikuti   oleh amoxicilin dan cefadroxil.

## DAFTAR PUSTAKA
1. Adam, S. 1992. Dasar-dasar Mikrobiologi dan  Parasitologi  untuk  Perawat .  Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC.
2. Brooks, G. F., Butel, J. S., and Morse, S. A.   2007. Mikrobiologi   Kedokteran .   Edisi 23.   Jakarta:   Penerbit   Buku   Kedokteran EGC.
3. Hadinegoro,   S.   R.   1999. Masalah   Multi Drug Resisten pada Demam Tifoid Anak . Jakarta:   Cermin   Dunia   Kedokteran.   No.
124: 5-8.
4. Hadioetomo,   R.S.1993.
Mikrobiologi
Dasardalam Praktek Teknik dan Prosedur Dasar   Laboratorium .   Jakarta:   Penerbit Gramedia.
5. Irianto,   K.   2013. Mikrobiologi   Medis . Cetakan I. Bandung: Penerbit Alfabeta.
6. Jawetz,   E., et   al. 2008. Mikrobiologi Kedokteran. Edisi   20.   San   Fransisco: University Of California.
7. Katzung, B. G. 2004. Farmakologi Dasar dan Klinik. Edisi 4. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC.
8. Koneman, E.W., Allen, S.D., Dowell, V.R., Janda, W.M., Sommers, H.M., Winn, W.C. 1988. Diagnostic   Microbiology .   Third
Edition.Pennsylvania: Lippincott
Company.
9. Kusmawan,  A.   2008. Infeksi  Nosokomial di Klinik Gigi . Skripsi. Fakultas Kedokteran Gigi. Universitas Sumatera Utara. Medan.
10. Lim, D. 1998. Microbiology . Edisi 2. New York: Mc Grow Hill Book Company.
11. Noer,   S.F.   2012. Pola   Bakteri   dan Resistensinya   Terhadap   Antibiotik   yang Ditemukan   pada   Air   dan   Udara   Ruang Instalasi   Rawat   Khusus   RSUP   Dr. Wahidin Sudirohusodo Makassar. Majalah Farmasi dan Farmakologi, Vol. 16, No.2 – Juli 2012, hlm. 73-78.
12. Pelczar,   M.   J.,   Chan,   E.   C.   S.   2007. Elements Of Microbiology . New York: Mc Grow Hill Book Company.
13. Refdanita,  Maksum  R,  Nurgani,   Endang. 2004. Pola   Kepekaan   Kuman   Terhadap Antibiotika   di   Ruang   Rawat   Intensif Rumah   Sakit   Fatmawati   Jakarta   Tahun 2001 – 2002 . Jakarta: Makara Kesehatan, Vol. 8, No. 2,Desember : 41-48.
14. Sukandar,   E.   Y.,   dkk.   2008. ISO Farmakoterapi . Jakarta: Penerbit PT. ISFI. 15. Waluyo,   L.   2008. Mikrobiologi   Umum .
UPT.   Malang:   Penerbit   Universitas Muhammadiyah Malang. Jurnal Surya Medika Volume 1 No. 2 [2016] 25