## ISSN: 0215-7950

## Volume 18, Nomor 6, November 2022
Halaman 239–247 DOI: 10.14692/jfi.18.6. 239–247
Kehilangan Hasil Akibat Busuk Umbi dan Identifikasi Agens Penyebabnya pada Ubi Jalar di Kecamatan Cilimus,
Kabupaten Kuningan, Provinsi Jawa Barat
Yield Loss Due to Tuber Rot and Identification of the Causal Agents in Sweet Potatoes in Cilimus District, Kuningan Regency,

## West Java Province
Atiqah Luthfi Anawati Zahra, Giyanto, Widodo* Institut Pertanian Bogor, Bogor, 16680

## ABSTRAK
Pada  tahun  2019  terjadi  peningkatan  insidensi  busuk  umbi  pada  tanaman  ubi  jalar  bersamaan dengan musim hujan berkepanjangan yang melanda sebagian besar Pulau Jawa sehingga menyebabkan kehilangan hasil. Salah satu daerah yang terdampak ialah Kecamatan Cilimus, Kabupaten Kuningan, Provinsi Jawa Barat. Penelitian dilakukan untuk menghitung kehilangan hasil ubi jalar yang diakibatkan oleh permasalahan busuk umbi dan mengidentifikasi penyebabnya di Kecamatan Cilimus. Kehilangan hasil akibat busuk umbi berkisar 4.3% dan 19.7% dengan rata-rata 9.4%.  Jika disandingkan dengan data penurunan produksi ubi jalar di Kecamatan Cilimus dari tahun 2018 sampai tahun 2021 maka permasalahan  busuk  umbi  tersebut  menunjukkan  peran  yang  penting  terhadap  penurunan  produksi di daerah tersebut. Hasil identifikasi patogen mengonfirmasi Ralstonia solanacearum sebagai bakteri penyebab  busuk  umbi.    Berdasarkan  gejala  morfologi  diketahui  bahwa R. solanacearum menjadi penyebab utama permasalahan busuk umbi (56.8%), diikuti oleh hama Cylas formicarius (29.1%), dan kombinasi keduanya (14.1%).  Pola tanam dan teknik budi daya yang dilakukan oleh petani diduga memicu perkembangan permasalahan busuk umbi di area penelitian tersebut.
Kata kunci: Cylas formicarius , pola tanam, polymerase chain reaction , Ralstonia solanacearum, teknik budi daya

## ABSTRACT
In 2019 there was an increase in the incidence of tuber rot in sweet potato crops along with the prolonged rainy season which hit most of Java Island, causing yield losses. One of the affected areas was Cilimus District, Kuningan Regency, Province of West Java. This research was conducted to calculate the yield loss of sweet potatoes caused by tuber rot problems and to identify the causes in Cilimus District.  Yield losses due to tuber rot ranged from 4.3% and 19.7% with an average of 9.4%.  Compared with data on the decrease in sweet potato production in Cilimus District from 2018 to 2021, the tuber rot problem showed an essential role in decreasing production in the area.  The results of the identification of the pathogen confirmed Ralstonia solanacearum was the causal agent of tuber rot.  Based on the morphological symptoms, it was known that R. solanacearum is the main cause of tuber rot problems (56.8%), followed by Cylas formicarius (29.1%), and a combination of both (14.1%).  The cropping patterns and cultivation techniques used by farmers were suspected of triggering the development of tuber rot problems in the research area.
Keywords: cropping patterns, cultural techniques, Cylas formicarius , polymerase chain reaction, Ralstonia solanacearum

## PENDAHULUAN
Ubi  jalar  ( Ipomoea batatas )  merupakan salah  satu  tanaman  pangan  yang  berperan penting dalam menghadapi risiko kerawanan pangan  di  wilayah  yang  terdampak  oleh bencana alam karena tanaman ini dapat tumbuh  pada  lahan  marginal  dan  memiliki nutrisi  yang  memadai  untuk  kebutuhan tumbuh (Iese et al. 2018).  Sentra produksi ubi jalar di Indonesia ialah di Provinsi Jawa Barat, Jawa  Tengah,  Jawa  Timur,  Sumatera  Utara, Nusa Tenggara Timur, dan Papua (Nuryati et al. 2016).  Luas panen ubi jalar di Indonesia mencapai 106 226 ha dengan rata-rata produk- tivitas 18.02 ton ha -1 (Kementan RI 2018). Permasalahan hama dan penyakit menjadi salah  satu  kendala  produksi  ubi  jalar  dan berpotensi  menyebabkan  kehilangan  hasil. Penyakit  dengan  gejala  pembusukan  pada umbi  merupakan  salah  satu  kendala  penting yang dapat menurunkan hasil secara langsung karena  terjadi  pada  bagian  tanaman  yang dipanen.  Penyakit  tersebut  dapat  muncul, baik  pada  saat  di  lahan  maupun  dalam penyimpanan.  Beberapa  cendawan,  seperti Fusarium solani, F. oxysporum, Sclerotium rolfsii, Lasiodiplodia theobromae, Rhizopus stolonifera, Aspergillus ochraceus, dan A. flavus telah  dilaporkan  sebagai  penyebab gejala  busuk  pada  umbi  ubi  jalar  (Olaitan 2012;  Nsofor  2020;  Gyasi et al. 2022). Sementara itu patogen dari kelompok bakteri yang  dilaporkan  dapat  menyebabkan  gejala pembusukan pada umbi ialah Pectobacterium wasabiae (Golkhandan et al . 2013), beberapa spesies Clostridium (da Silva et al. 2019), dan Erwinia spp. (Nsofor 2020). Selain itu, proses panen  dan  penanganan  pasca  panen  yang kurang baik dapat membuka jalur masuk bagi perkembangan  patogen  yang  menginfeksi umbi. Selama masa penyimpanan, kandungan nutrisi di dalam ubi jalar akan mengalami perubahan,  khususnya  kadar  pati  dan  air. Semakin  lama  waktu  penyimpanan,  rasa  ubi akan semakin manis, namun juga berpeluang terhadap berkembangnya gejala pembusukan yang disebabkan oleh organisme pengganggu tanaman,  baik  yang  terbawa  dari  lapangan
maupun  selama  masa  penyimpanan  (Ray dan  Ravi  2005).  Beberapa  penyebab  busuk umbi  yang  dapat  berkembang  selama  masa penyimpanan  ialah  busuk  kapang  biru ( Penicillium spp.),  busuk  lunak  ( Rhizopus stolonifer ),  busuk  bakteri  ( Dickeya dadantii dan Ralstonia solanacearum ),  busuk  hitam ( Ceratocystis  fimbriata ),  busuk  fusarium
( Fusarium sp.),  dan  busuk  hitam  jawa ( Botryodiplodia theobromae )  (Ahmed et al . 2013; Ray 2015; Edmund et al . 2016). Pada  tahun  2021  hasil  panen  ubi  jalar  di Kecamatan  Cilimus  yang  merupakan  sentra produksi utama di Kabupaten Kuningan ialah sebesar 35 073 ton. Jumlah tersebut menurun 15.9%  dibandingkan  dengan  produksi  pada tahun 2018, yaitu 41 713 ton (BPS Kabupaten Kuningan  2022).  Berdasarkan  informasi awal yang diperoleh dari petani, busuk umbi merupakan  kendala  yang  diduga  sebagai penyebab turunnya produksi ubi jalar di lokasi tersebut. Tujuan penelitian  ialah menghitung kehilangan hasil ubi jalar yang diakibatkan oleh penyakit busuk umbi di Kecamatan Cilimus, Kabupaten  Kuningan  dan  mengidentifikasi penyebab  busuk  umbi  tersebut.    Dengan menghitung  tingkat  kehilangan  hasil  akibat busuk  umbi  diharapkan  dapat  memastikan bahwa  penurunan  produksi  yang  terjadi  ada kaitannya  dengan  permasalahan  tersebut. Sementara  itu  identifikasi  penyebab  yang dihasilkan  dapat  memberikan  informasi penting  dalam  menyusun  langkah-langkah pengelolaan  yang  tepat  di  masa  yang  akan datang.

## BAHAN DAN METODE
Penentuan Lokasi dan Pengambilan Sampel Survei  dilakukan  di  Kecamatan  Cilimus, Kabupaten Kuningan dan ditentukan 15 lahan ubi jalar yang baru selesai melakukan pemanenan. Sampel umbi dari masing-masing lahan terdiri atas umbi hasil penyortiran oleh petani  di  lahan  dan  oleh  pihak  pengepul di  lokasi  dekat  lahan.    Pada  saat  survei dilakukan wawancara dengan petani untuk mengumpulkan  informasi  tentang  budi  daya
Jurnal Fitopatologi Indonesia
Zahra et al. tanaman  ubi  jalar  yang  diterapkan  oleh masing-masing petani.
Penghitungan Kehilangan Hasil Pada  masing-masing  lahan,  total  bobot umbi yang diangkut ke pasar oleh pengepul, sisa  umbi  hasil  penyortiran  oleh  pengepul, dan sisa umbi yang ditinggalkan oleh petani di lahan akibat busuk ditimbang. Kehilangan hasil dihitung berdasarkan pada proporsi umbi busuk dengan total umbi yang dipanen dengan rumus:
Kehilangan hasil (%) = B + A A × 100%, dengan
A,  bobot  umbi  yang  busuk;  B,  total  bobot umbi yang dipasarkan.

## Identifikasi Penyebab Berdasarkan Gejala
Morfologi Selanjutnya,  sebanyak  50  umbi  yang menunjukkan gejala kerusakan diambil secara acak dari masing-masing lahan sebagai sampel untuk menghitung proporsi penyebab kerusakan  berdasarkan  gejala  morfologi. Sampel  umbi  tersebut  dipilah  menjadi tiga kelompok berdasarkan pada gejala kerusakan oleh hama boleng ( C. formicarius ), pembusukan  bukan  oleh  hama  boleng,  dan kombinasi keduanya. Gejala kerusakan umbi oleh hama boleng ditandai oleh lubang-lubang pada permukaan umbi dengan diameter berkisar  antara  1.5  mm  dan  2  mm  (Mau et al. 2021).  Umbi  yang  dipotong  melintang memperlihatkan lubang-lubang kecil memanjang  yang  merupakan  hasil  gerekan dari larva C. formicarius .    Gejala  kerusakan lainnya ialah pembusukan umbi yang muncul dari  bagian  tengah  umbi  dan  busuk  yang muncul dari bagian ujung umbi.
Identifikasi Penyebab Busuk Umbi Sampel umbi dengan gejala busuk dibawa  ke  laboratorium,  dibersihkan  dengan air,  kemudian  dibelah  dengan  pisau  steril. Potongan umbi dilembapkan selama 5 hari di dalam kotak plastik dan diamati terbentuknya lendir bakteri pada permukaan umbi.  Suspensi bakteri diisolasi pada medium agar-agar nutrien  (AN)  dan  diinkubasi  selama  48  jam
pada suhu kamar, dan dimurnikan dari koloni tunggal.
Bakteri  diidentifikasi  menggunakan  uji Gram (Gregersen 1978) dan uji pada medium selektif tetrazolium chloride (TZC).  Jika bakteri merupakan Gram positif dan tumbuh pada medium TZC maka diidentifikasi sebagai Ralstonia solanacearum (Kelman 1954). Identifikasi  secara  molekuler  dilakukan dengan metode polymerase chain reaction (PCR) menggunakan sepasang primer spesifik R. solanacearum ,  yaitu  primer  759F  (5’- GTCGCCGTCAACTCACTTTCC-3’)  dan primer  760R  (5’-  GTCGCCGTCAGCAATG CGGAATCG-3’)  (Opina et al. 1997). Ekstraksi  DNA  total  bakteri  menggunakan metode CTAB (Murray dan Thompson 1980). Reaksi amplifikasi terdiri atas 12.5 μ L Dream Taq  Green  PCR  Master  Mix  (2X)  (Thermo Scientific),  1  μ L masing-masing primer,
9.5 μ L air bebas nuklease dan 1 μ L DNA bakteri.    Amplifikasi  DNA  target  diawali dengan tahap pra denaturasi pada suhu 94 ℃ selama 2 menit, dilanjutkan dengan 40 siklus yang terdiri atas tahap-tahap denaturasi pada suhu 94 ℃ selama 30 detik, penempelan pada suhu  55  ℃  selama  30  detik,  pemanjangan awal  pada  suhu  72  ℃  selama  1  menit,  dan pemanjangan  akhir  pada  suhu  72  ℃  selama 5  menit.  Fragmen  DNA  hasil  amplifikasi diamati menggunakan perangkat elektroforesis pada gel agarosa 1% dengan penyangga TAE 0.5x (Siregar et al. 2021).

## HASIL
Kehilangan Hasil Akibat Busuk Umbi Sebagian besar masa panen ubi jalar di  Kecamatan  Cilimus  berlangsung  mulai bulan  Januari  sampai  bulan  Maret.  Umbi yang  sudah  dipanen  dikumpulkan  di  lahan, kemudian dipilah antara umbi yang baik dan umbi yang busuk oleh penggarap lahan. Umbi yang busuk umumnya ditinggalkan di lahan, sedangkan  lainnya  diangkut  ke  tepi  jalan untuk  kemudian  disortir  kembali  oleh  pihak pengepul. Umbi yang disortir dibagi menjadi tiga kelompok, yaitu (1) umbi dengan ukuran besar dan memiliki kualitas yang baik, (2) umbi
berukuran sedang dan memiliki kualitas yang  baik,  dan  (3)  umbi  yang  berukuran sedang atau kecil dengan kualitas kurang baik.  Pada  pengamtan  15  lahan  dengan luasan  yang  berbeda-beda  kehilangan  hasil akibat  busuk  umbi  berkisar  antara  4.3% dan  19.7%  dengan  rata-rata  9.4%  (Tabel  1).
Busuk Umbi pada Ubi Jalar Gejala  kerusakan  umbi  yang  ditemukan di lapangan terbagi menjadi dua golongan, yaitu  umbi  yang  permukaannya  berlubang
karena gerekan hama boleng dan umbi yang dagingnya  melunak  atau  busuk.  Gejala  awal serangan  hama  boleng  ditandai  oleh  lubang- lubang  gerekan  yang  cenderung  masih berkumpul di dekat permukaan umbi (Gambar 1a).    Lubang-lubang  gerekan  yang  sudah menyebar  ke  seluruh  bagian  umbi  menandai gejala lanjut dari hama boleng (Gambar 1b).
Gejala busuk umbi yang ditemukan dapat dibedakan  menjadi  dua,  yaitu  busuk  yang muncul  dari  bagian  tengah  umbi  dan  busuk yang  muncul  dari  bagian  ujung  umbi.  Jika
Tabel  1    Bobot  umbi  ubi  jalar  hasil  panen  dan  kehilangan  hasil  panen  pada  lahan  pengamatan  di Kecamatan Cilimus, Kabupaten Kuningan
Lahan ke- Luas lahan (m 2 ) Bobot umbi (kg) Kehilangan hasil (%) Total Umbi dalam kondisi baik Umbi dengan gejala busuk 1 1928.6 3205 2865 340 10.6 2 285.7 47 45 2 4.3 3 1857.1 3526 3175 351 10.0 4 1857.1 2492 2281 211 8.5 5 571.4 341 326 15 4.4 6 1785.7 3511 3130 381 10.9 7 2000.0 2438 2216 222 9.1 8 1428.6 979 915 64 6.5 9 1428.6 838 767 71 8.5 10 2142.9 2552 2050 502 19.7 11 3428.6 5610 5187 423 7.5 12 2357.1 6689 6054 635 9.5 13 1428.6 2157 2009 148 6.9 14 1428.6 1913 1781 132 7.1 15 1428.6 3235 2703 532 16.4 Rata-rata kehilangan hasil 9.4 ± 4.1 a b
Gambar 1  Gejala busuk umbi pada ubi jalar akibat serangan hama boleng ( Cylas formicarius ). a, Lubang-lubang gerekan cenderung berkumpul di dekat permukaan umbi pada serangan awal dan b, Lubang-lubang gerekan menyebar ke seluruh bagian umbi pada serangan lanjut.
Jurnal Fitopatologi Indonesia
Zahra et al. umbi dengan gejala pembusukan pada bagian tengah dipotong melintang maka akan tampak gejala menghitam dekat permukaan kulit dan kecokelatan  di  antara  jaringan  umbi  yang membusuk dan jaringan yang sehat (Gambar 2a).  Pada  serangan  berat  bagian  umbi  yang busuk sudah menjalar hingga ke bagian tengah umbi dan akhirnya menyerang seluruh bagian umbi (Gambar 2b). Pada kondisi ini permukaan kulit umbi sudah berubah menjadi kehitaman, daging  umbi  melunak  ketika  disentuh dan  mengeluarkan  bau  yang  tidak  sedap. Umbi yang mengalami pembusukan pada ujung umbi hanya terjadi pada bagian ujung umbi  yang  terhubung  dengan  akar  utama. Potongan  melintang  memperlihatkan  pola bintik-bintik  cokelat  hingga  kehitaman  pada daging umbi dengan batas kebasahan berwarna kecokelatan pada bagian tepi bercak (Gambar 3a). Semakin berat serangannya, bintik-bintik yang  terbentuk  juga  semakin  banyak  dan akhirnya  memenuhi  lingkaran  pada  umbi bagian dalam sehingga daging umbi menjadi cokelat tua (Gambar 3b).
Penyebab Busuk Umbi pada Ubi Jalar Setelah dilembapkan selama 5 hari, sampel umbi  mengeluarkan  lendir  berwarna  putih agak  keruh  dan  tidak  ditemukan  koloni  dari kelompok cendawan. Pemurnian isolat bakteri pada medium AN menghasilkan koloni bakteri berwarna putih kekuningan.
Hasil uji Gram menunjukkan terbentuknya lendir  yang  merupakan  reaksi  antara  sel- sel  bakteri  dan  larutan  KOH  3%  (Gambar 4a). Hal tersebut menandakan bahwa bakteri tersebut  merupakan  bakteri  Gram  negatif. Koloni  bakteri  pada  medium  selektif  TZC berwarna  merah  di  bagian  tengah  dengan tepi berwarna keputihan (Gambar 4b).  Hasil tersebut  mengindikasikan  bahwa  bakteri penyebab busuk umbi ialah R. solanacearum. Identifikasi  secara  molekuler  menggunakan primer  spesifik R. solanacearum berhasil mengamplifikasi fragmen DNA sesuai target, yaitu berukuran 280 pb (Gambar 5). Berdasarkan  pada  gejala  morfologi diperoleh  proporsi  penyebab  busuk  umbi ialah  56.8%  disebabkan  oleh  bakteri R. solanacearum ,  29.1%  disebabkan  oleh C. formicarius ,  dan  14.1%  disebabkan  oleh kombinasi dari serangan keduanya (Tabel 2).

## PEMBAHASAN
Jika  dilihat  data  penurunan  jumlah produksi di Kecamatan Cilimus yang sebesar 15.9% (BPS Kabupaten Kuningan 2022) dan dibandingkan dengan pengamatan kehilangan hasil  di  lahan  sebesar  9.4%  (Tabel  1)  maka insidensi busuk umbi diduga berkontribusi penting terhadap kehilangan hasil tersebut.
Bakteri  penyebab  busuk  umbi  ubi  jalar yang  dilaporkan  oleh  Ahmed et al .  (2013)

## a b
Gambar 2  Gejala busuk umbi pada ubi jalar yang  dimulai  dari  bagian  tengah  umbi.  a, Gejala  menghitam  dekat  permukaan  kulit dan kecokelatan di antara jaringan umbi yang membusuk dan jaringan yang sehat; b, busuk pada seluruh bagian umbi.
a b
Gambar 3  Gejala busuk umbi pada ubi jalar yang  dimulai  dari  bagian  ujung  umbi  dekat pangkal batang. a, Gejala berupa bintik-bintik cokelat  hingga  kehitaman  pada  daging  umbi dengan batas kebasahan berwarna kecokelatan di  bagian  tepi;  dan  b,  daging  umbi  berubah warna menjadi cokelat tua.
M 1A 2A 3A 1B 2B 3B
300 pb 280 pb
Gambar 5  Fragmen DNA spesifik Ralstonia solanacearum hasil amplifikasi dengan primer spesifik 759F/760R. M, penanda DNA 100 pb; 1A, 2 A dan 3A sampel bakteri yang diisolasi dari umbi dengan gejala pembusukan dari permukaan kulit; 1B, 2B dan 3B sampel bakteri yang diisolasi dari sampel dengan gejala pembusukan dari bagian ujung dekat batang.
Tabel 2  Komposisi penyebab busuk umbi yang disebabkan oleh bakteri Ralstonia solanacearum dan kumbang Cylas formicarius berdasarkan gejala morfologisnya Lahan sampel Persentase gejala pada sampel (%) Bakteri Kumbang Bakteri dan Kumbang 1 84 12 4
2
70 26 4 3 74 22 4 4 64 30 6 5 82 18 0 6 66 24 10 7 48 38 14 8 50 36 14 9 62 30 8 10 44 24 32 11 42 34 24 12 26 48 26 13 52 30 18 14 32 26 42 15 56 38 6 Rata-rata 56.8 29.1 14.1 a b
Gambar 4  Identifikasi bakteri penyebab busuk umbi pada ubi jalar. a, Uji Gram bakteri dengan larutan KOH 3% menunjukkan terbentuknya lendir dan b, Koloni bakteri pada medium TZC setelah 24 jam masa inkubasi.
Jurnal Fitopatologi Indonesia
Zahra et al. dan  Chang et al. (2017)  ialah Ralstonia solanacearum dan Dickeya chrysantemi. Kedua bakteri ini merupakan golongan bakteri  Gram  negatif.    Uji  pada  medium TZC  dan  identifikasi  secara  molekuler mengonfirmasikan  bahwa  bakteri  penyebab busuk umbi ini ialah R. solanacearum .  Bakteri R. solanacearum bersifat tular tanah dan dapat tersebar  melalui  irigasi,  bahan  perbanyakan tanaman, dan alat pertanian. Bakteri ini dapat bertahan di dalam tanah hingga 3 tahun dan pada  sisa-sisa  tanaman  selama  2-3  tahun (CABI  2014).    Apabila  terdapat  luka  pada bahan perbanyakan tanaman saat pindah tanam ke lahan yang sudah terinfeksi oleh bakteri ini maka tanaman yang tumbuh dapat terinfeksi. Berdasarkan  pengamatan  gejala  morfologi dan identifikasi secara molekuler busuk umbi di  lokasi  penelitian  didominasi  oleh  bakteri, kemudian  diikuti  oleh  serangan  kumbang C. formicarius dan  gabungan  keduanya (Tabel 2).    Perilaku  kumbang C. formicarius yang menyebabkan lubang-lubang pada permukaan umbi dapat membuat celah bagi penyakit tular tanah untuk masuk dan menginfeksi tanaman. Melalui  lubang  gerekan  yang  dibuat  oleh kumbang imago betina saat bertelur, bakteri R. solanacearum mampu masuk dan menginfeksi umbi. Area serangan juga dapat meluas akibat aktivitas  makan  larva  yang  terus  menggerek ke bagian dalam umbi. Setelah imago keluar dari pupa, ada kemungkinan kumbang imago membawa koloni bakteri pada tubuhnya saat melewati  umbi  busuk  yang  terdapat  pada dinding lubang gerekan. Saat imago keluar dari umbi untuk makan dan bertelur pada tanaman  yang  sehat,  bakteri  akan  masuk  ke dalam  jaringan  tanaman  dan  menginfeksi tanaman yang baru tersebut. Oleh karena itu, kumbang penggerek C. formicarius dapat menjadi pembawa dan membantu persebaran dari  penyakit  busuk  umbi  yang  disebabkan oleh R. solanacearum .
Berdasarkan pengamatan lapang dan wawancara dengan petani keberadaan busuk  umbi  yang  berperan  penting  terhadap kehilangan  hasil  ubi  jalar  di  Kecamatan Cilimus,  Kabupaten  Kuningan  diduga
berkaitan  erat  dengan  sistem  budi  daya  di lokasi tersebut.  Salah satu penyebabnya ialah waktu  tanam  yang  tidak  serempak  sehingga menyebabkan  tanaman  inang  dari  hama  dan patogen yang berperan terhadap pembusukan umbi  selalu  tersedia  di  lahan.  Selain  itu, perilaku petani yang membiarkan begitu saja tanaman yang sudah terserang busuk umbi di lahan juga dapat menambah tingkat insidensi penyakit  dari  waktu  ke  waktu.  Peningkatan insidensi busuk umbi juga dapat disebabkan oleh  sistem  irigasi  yang  terhubung  dari  satu lahan  ke  lahan  lainnya.  Distribusi  air  pada lahan  di  Kecamatan  Cilimus  berasal  dari satu mata air dan kemudian disebar melalui parit-parit  kecil  yang  bersebelahan  dengan lahan. Hal ini dapat menyebabkan penyebaran penyakit, terutama bakteri.
Berdasarkan  penelitian  yang  dilakukan pada pertanaman ubi jalar di Kecamatan Cilimus,  Kabupaten  Kuningan  dapat disimpulkan  bahwa  permasalahan  busuk umbi berkontribusi terhadap penurunan hasil. Penyebab  utama  pembusukan  umbi  ialah bakteri R. solanacearum , kemudian diikuti secara  berturut-turut  oleh    hama  boleng  ( C. formicarius ) dan gabungan keduanya.  Sistem dan teknik budi daya ubi jalar yang dilakukan oleh  petani  setempat  dapat  berperan  sebagai pemicu permasalahan busuk umbi tersebut.

## DAFTAR PUSTAKA
Ahmed  NN,  Islam  MR,  Hossain  MA,  Meah MB,  Hossain  MM.  2013.  Determination of  races  and  biovars  of Ralstonia solanacearum causing bacterial wilt disease of potato. Journal of Agricultural Science.  5(6):86–93.  DOI:  https://doi. org/10.5539/jas.v5n6p86.
[BPS Kabupaten Kuningan].  2022. Kabupaten Kuningan dalam Angka 2022. https://kuningankab.bps.go.id/publication/ download.html?nrbvfeve=MGZkOGQyNj U0NDk2ZWU3Y2ZhN2Q3NmVm&xzm n=aHR0cHM6Ly9rdW5pbmdhbmthYi5ic HMuZ28uaWQvcHVibGljYXRpb24vMj AyMi8wMi8yNS8wZmQ4ZDI2NTQ0OT
ZlZTdjZmE3ZDc2ZWYva2FidXBhdGVu LWt1bmluZ2FuLWRhbGFtLWFuZ2thLT IwMjIuaHRtbA%3D%3D&twoadfnoarfe auf=MjAyMy0wNi0wNiAxNTo1NDozN Q%3D%3D [diakses 06 Juni 2023].
[CABI] Centre for Agricultural and Biosciences International. 2014. Cylas formicarius (sweet  potato  weevil).  https://www.cabi. org/isc/datasheet/17408 [diakses 14 Maret 2021].
Chang  Y,  Choi  I,  Cho  AR,  Han  J.  2017. Reduction  of Dickeya chrysanthemi on fresh-cut iceberg lettuce using antimicrobial sachet  containing  microencapsulated oregano essential oil. LWT – Food Science and Technology. 82:361–368. DOI: https:// doi.org/10.1016/j.lwt.2017.04.043.
da Silva WL, Yang KT, Pettis GS, Soares NR, Giorno  R,  Clark  CA.    2019.    Flooding- associatedsoft rot of sweet potato storage roots  caused  by  distinct Clostridium isolates.    Plant  Disease.    103(12):3050– 3056.  DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS- 03-19-0548-RE. Edmund  BA,  Boyette  MD,  Clark  CA, Ferrin DM, Smith TP, Holmes GJ. 2014. Postharvest  Handling  of  Sweet  Potatoes . North  Carolina  (US):  North  Carolina Cooperative Extension Service.
Golkhandan  E,  Kamaruzaman  S,  Sariah  M,
Abidin  MAZ,  Nazerian  E,  Yassoralipour A.    2013.  First  report  of  softrot  disease caused  by Pectobacterium wasabiae on sweet potato, tomato, and eggplant in Malaysia. Plant Disease. 97(5):685.  DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-08-12-0759- PDN.
Gregersen  T.  1978.  Rapid  method  for distinction  of  gram-negative  from  gram- positive  bacteria.  European  Journal  of Applied Microbiology and Biotechnology. 5(2):123–127.  DOI:  https://doi. org/10.1007/BF00498806.
Gyasi  E, Akrofi  S, Adongo  BA,  Osafo  EA, Kotey DA, Mohammed A.  2022.  Fungi associated with with sweet potato tuber rot at  CSIR-PGRRI,  Bunso,  Eastern  Region, Ghana.    Ghana  Journal  of  Agricultural
Science. 57(1):106–112.  DOI: https://doi. org/10.4314/gjas.v57i1.8 . Iese V, Holland E, Wairiu M, Havea R, Patolo S, Nishi M, Hoponoa T, Bourke RM, Dean A,  Waqainabete  L.    2018.    Facing  food security:  The  rise  and  rise  of  the  sweet potato in the Pacific Islands.  Global Food Security.  18:48–56.    DOI: https://doi. org/10.1016/j.gfs.2018.07.004 . Kelman  A.    1954.    The  relationship of  pathogenicity  in Pseudomonas solanacearum to  colony  appearance  on tetrazolium  medium.    Phytopathology. 44(12):693–695.
[Kementan RI] Kementerian Pertanian Republik Indonesia. 2018. Produktivitas Ubi Jalar menurut Provinsi, 2014– 2018. https://www.pertanian.go.id/ home/?show=page&act=view&id=61 [diakses 1 Maret 2021].
Mau  YS,  Wadu  MN,  Ndiwa  ASS,  Markus JER,  Arsa  IGBA.  2021.  A  screening  of resistance  to  sweet  potato  weevil  ( Cylas formicarius Fab.)  in  collection  of  sweet potato clones under laboratory conditions. International Journal of Tropical Drylands. 5(2):41–47. DOI: https://doi.org/10.13057/ tropdrylands/t050201 .
Murray  MG,  Thompson  WF.  1980.  Rapid isolation of high molecular weight DNA. Nucleic  Acids  Research.  8(19):4321– 4325. DOI: https://doi.org/10.1093/ nar/8.19.4321.
Nsofor  GC.  2020.  Fungal  and  bacterial pathogens  associated  with  soft  rot disease  of  sweet  potato  ( Ipomoea batata L.  Lam).  Nigerian  Agricultural  Journal. 51(3):213218.
Nuryati L, Waryanto B, Akbar. 2016. Outlook Komoditas Pertanian Tanaman Pangan Ubi Jalar. Jakarta (ID): Pusat Data dan Sistem Informasi Pertanian Kementan.
Olaitan OO.  2012.  Bio-deterioration of sweet potato ( Ipomoea batatas Lam) in storage, inoculation-induced  quality  changes,  and control  by  modified  atmosphere.  Journal of  Applied  Science  and  Environmental Management.  16(2):189–193.
Jurnal Fitopatologi Indonesia
Zahra et al.
Opina N, Tavner F, Hollway G, Wang JF, Li TH, Maghirang R, Fegan M, Hayward AC, Krishnapillai V, Hong WF et al. 1997. A novel method for development of species and strain-specific DNA probes and PCR primers  for  identifying Burkholderia solanacearum (formerly Pseudomonas solanacearum). Asia  Pacific  Journal  of Molecular  Biology  and  Biotechnology. 5(1):19–30.
Ray  RC.  2015.  Post  harvest  handling, processing and value addition of elephant foot  yam  –  an  overview.  International
Journal of Innovative Horticulture. 4(1):1– 10.
Ray RC, Ravi V. 2005. Post harvest spoilage of sweetpotato in tropics and control measures. Critical  Reviews  in  Food  Science  and Nutrition. 45(7–8):623–644. DOI: https:// doi.org/10.1080/10408390500455516.
Siregar BA, Nuri P, Halimah H, Tjahjono B, Golan GD. 2021. First report on infection of Eucalyptus pellita seeds  by Ralstonia solanacearum. Enviromental  Science Proceedings.  3(1):94.  DOI:  https://doi. org/10.3390/IECF2020-07904 .