PENGARUH PEMBERIAN NATA DE NANNO DAN Nannochloropsis oculata TERHADAP POPULASI Brachionus plicatilis
EFFECT OF GIVING NATA DE NANNO AND Nannochloropsis oculata ON POPULATION OF Brachionus plicatilis
Indah Permata Sari, Laksmi Sulmartiwi dan Boedi Setya Rahardja
Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Kampus C Mulyorejo - Surabaya, 60115 Telp. 031-5911451

## Abstract
This  study  aims  to  determine  the  effect  of  Nata  De  Nanno  and Nannochloropsis  oculata for Brachionus  plicatilis population.  The  research  method  used  was  experimental  with  a  Completely Randomized Design (CRD) with six treatments and four replications. The treatments used were: (A) Nata de  Nanno  5x10 9 cells/L N.  oculata ,  (B)  Nata  de  Nanno  4x10 9 cells/L N.  oculata ,  (C)  Nata  de  Nanno 3x10 9 cells/L N. oculata , (D) N. oculata 5x10 9 cells/L, (E) N. oculata 4x10 9 cells/L and (F) N. oculata 3x10 9 cells/L. Analysis of data using variant analysis (ANOVA) and to determine the differences between treatments performed tests Distance  Regression Duncan. The results showed that administration of Nata De  Nanno  and Nannochloropsis  oculata for Brachionus  plicatilis populations  exert  a  significantly different  (p<0,05)  in  each  treatment  delivery  Nata  De  Nanno  and Nannochloropsis  oculata with  the highest peak population of young B. plicatilis achieved on the fifth day of treatment D ( N. oculata ) with a concentration of 5x10 9 cells/L  produce  a population  young B. plicatilis as  much as  98,5  individuals/ml. The  lowest  peak  population  of  young B.  plicatilis on  the  fifth  in  treatment  C  (Nata  de  Nanno)  with  a concentration  of  3x10 9 cells/L N.  oculata 76,75  produce  a  population  of  young B.  plicatilis 76,75 individuals/ml. Water quality parameters during the study was the temperature ranges between 27-31°C, a salinity  of  31  ppt,  pH  value  7,  DO  ( Dissolved  oxygen )  ranged  between  5-8  mg/L,  and  ammonia  levels ranged from 0-0.25 mg/L.
Keywords : Brachionus plicatilis , Nata De Nanno, Nannochloropsis oculata

## Pendahuluan
Permasalahan  akan  kebutuhan  pakan akan muncul pada saat organisme berada dalam lingkungan  budidaya,  karena  pakan  merupakan salah satu faktor pembatas bagi organisme yang dibudidayakan.  Pakan  alami  merupakan  faktor penentu  keberhasilan  pemeliharaan  larva  pada unit  pembenihan  ikan  perairan  laut.  Chumaidi dan  Priyadi  (1990)  menyatakan,  pakan  alami dalam  pemenuhan  kebutuhan  pakan  larva  ikan belum  dapat  digantikan  seluruhnya  oleh  pakan buatan,  karena  pakan  alami  lebih  disukai  oleh larva daripada pakan buatan.
Stadia  larva  ikan  pada  budidaya perairan  laut  membutuhkan  pakan  alami  yang terdiri  dari  fitoplankton  dan  zooplankton. Muslim  dkk.  (2009)  menyatakan,  salah  satu jenis  zooplankton  yang  merupakan  makanan yang tepat bagi stadia larva ikan Bawal Bintang ( Trachinotus blochii ) adalah Brachionus plicatilis karena memenuhi syarat sebagai pakan alami yaitu memiliki ukuran yang sesuai dengan bukaan  mulut  larva,  mudah  dicerna,  tidak beracun,  mudah  dikultur  secara  massal  dan mengandung  nutrisi tinggi  (Brown et  al. , 1997;
Fulks  and  Main,  1991)  serta  membutuhkan biaya  yang  rendah  (Hawkins  dan  Nakamura,
1999). B.  plicatilis membutuhkan  pakan berupa fitoplankton. Coutteau (1996)
menyatakan,  fitoplankton  merupakan dasar dari suatu  mata  rantai  dalam    ekosistem  perairan yang dapat dimanfaatkan langsung untuk pakan zooplankton.  Salah satu  jenis  fitoplankton  yang digunakan  dalam  kegiatan  budidaya  perairan laut adalah Nannochloropsis  oculata karena sebagai  sumber  makanan   bernutrisi  yang dibutuhkan  untuk  memproduksi zooplankton (Lavens and Sorgeloos, 1996). N. oculata mempunyai  kandungan  nutrisi  seperti  protein sebesar  38,65  persen,  lemak  0,49  persen, karbohidrat  0,048  persen,  dan  air  60,81  persen yang  penting  untuk  populasi  pertumbuhan zooplankton  (Balai  Budidaya  Laut  Lampung, 2002).
Ketersediaan N.  oculata harus  dalam jumlah yang cukup, tepat waktu dan berkesinambungan,  namun N.  oculata hidup bergantung  pada  musim.  Hal  ini  menyulitkan para  pembudidaya  untuk  memiliki  stok  murni
N.  oculata secara  terus  menerus . Ismi  (1999) menyatakan,  pada  musim  dan  kondisi  tertentu kultur  massal N.  oculata tidak  dapat  tumbuh dengan  baik.  Perkembangan N.  oculata pada musim  penghujan  dapat  terganggu  bahkan  sulit tumbuh  karena  sangat  bergantung  cahaya matahari.  Hal  ini  mendukung  pembuatan  Nata de Nanno  yang    merupakan  natan (endapan) N. oculata dalam    kepadatan  tinggi  yang diendapkan  dengan  menggunakan  bahan  kimia NaOH teknis. Nata de Nanno dapat memudahkan pembudidaya karena dapat digunakan  sebagai  alternatif  stok  untuk  siklus produksi  massal  fitoplankton N.  oculata berikutnya  dan  untuk  mendukung  pertumbuhan populasi B.  plicatilis (Balai  Budidaya  Laut Lampung, 2002).
Pembuatan  Nata  de  Nanno  dengan menggunakan  bahan  kimia  NaOH  teknis  ini belum diketahui pengaruhnya terhadap pertumbuhan  populasi B.  plicatilis sehingga perlu  adanya  penelitian  yang  bertujuan  untuk mengetahui pengaruh pemberian Nata de Nanno dan N. oculata terhadap populasi B. plicatilis.

## Metodologi
Alat-alat  yang  digunakan  meliputi botol  air  mineral  1  L  24  buah,  mikroskop, Sedgewich  Rafter , haemocytometer , handtally counter , cover  glass ,  tissue,  pipet,  pH  paper, termometer, refraktometer, DO test kit, amoniak test kit aerator, dan lampu.
Bahan-bahan yang digunakan  meliputi N.  oculata , B.  plicatilis ,  air  laut  salinitas  32-34 ppt,  NaOH  teknis,  asam  sitrat  5%,  alkohol, kaporit dan Na Thiosulfat.
Data  penelitian  hasil  pengamatan populasi anakan B. plicatilis dianalisa menggunakan  analisis  ragam (ANAVA)  untuk mengetahui  apakah  ada  pengaruh  antara perlakuan  yang  diberikan.  Bila  ada  pengaruh perlakuan  dilanjutkan  uji  Jarak  Berganda Duncan  dengan  tingkat  kepercayaan  95%  dan selang  kesalahan  5%  mengetahui  perbedaan antar perlakuan (Kusriningrum, 2008).

## Prosedur Penelitian
Peralatan  kultur  yang  akan  digunakan dicuci  dengan  detergen,  bilas  air  tawar  dan dikeringkan. Peralatan gelas tahan panas ditutup kapas,  kasa,  dibungkus  aluminium  foil  dan disterilisasi  dengan autoclave suhu  121 o C selama  30  menit.  Peralatan  selain  gelas disterilkan  dengan  larutan  kaporit  20  ppm selama  24  jam,  bilas  air  tawar.  Peralatan  yang tidak memungkinkan disterilisasi dengan autoclave dan  klorin  dapat  menggunakan alkohol  70%.  Sterilisasi  media  kultur  air  laut
disaring dengan filter bag dan larutan kaporit 20 ppm  selama  24  jam.  Pengecekan  dilakukan sebelum  kultur  dengan  Natrium  Thiosulfat  10 ppm  dan  aerasi  kuat,  tujuannya  adalah  supaya tidak ada kaporit tersisa dalam media (Cahyaningsih dkk., 2010).
Pembuatan  Nata  de  Nanno  dilakukan saat  kepadatan N.  oculata sebanyak  15  x  10 6 ind/ml. N.  oculata yang  telah  dikultur  massal dan  siap  dipanen  kemudian  diendapan  dalam bak  fiber  0,5  ton.  Media  kultur  ditambahkan larutan flokulan NaOH teknis atau disebut soda api  100  ppm.  Aerasi  kuat  selama  1  jam  supaya soda api tercampur merata. Setelah 1 jam, aerasi dimatikan dan ditunggu selama 10-15 jam, akan terjadi  proses  pengendapan  sempurna  ditandai dengan  adanya  larutan  hijau  mengendap  di dasar dan larutan bening berada di atas. Larutan bening  dibuang  maka  akan  diperoleh  endapan alga N. oculata kepadatan tinggi disebut Nata de
Nanno sebagai pakan B. plicatilis (Cahyaningsih  dkk.,  2010) . Nata  de  Nanno disimpan  dalam  lemari  pendingin  (kulkas) dengan suhu 7-9  C (Aliabbas, 2002). Penebaran  awal B.  plicatilis dengan kepadatan  10  ind/ml  sehingga  dalam  media  air laut  1  L  terdapat B.  plicatilis sebanyak  10.000 ekor.  Selanjutnya  memasukkan B.  plicatilis ke dalam  media berupa botol air mineral  volume 1 L,  kemudian  media  diberi  aerasi  (Sutomo  dkk., 2007).
Nata  de  Nanno  yang  siap  digunakan terlebih  dahulu  dilakukan  pengenceran  dengan penambahan  air  laut.  Menetralkan  pH  dan melepaskan  ikatan  antar  sel N.  oculata pada Nata  de  Nanno  diperlukan  asam  sitrat  5%. Perbandingan  pemberian  asam  sitrat  dengan NaOH  teknis  adalah  1:5,  dosis  optimal  NaOH teknis  100  ppm,  sedangkan  asam  sitrat  20  ppm yang  ditambahkan  sedikit  demi  sedikit  dengan pengadukan  (Balai  Budidaya  Laut  Lampung, 2002). Nata de Nanno yang telah encer disaring kemudian  dimasukkan  ke  dalam  media  air  laut steril  dan  diaerasi,  selanjutnya  diberikan langsung pada B. plicatilis. Sebelum pemberian pakan,  sebaiknya  dilakukan  pengeluaran  media melalui sistem inlet dan outlet untuk mempertahankan  jumlah  air  media  kultur (Redjeki, 1995).
Lingkungan kultur mempengaruhi populasi, mendukung pertumbuhan dan perkembangan B.  plicatilis, oleh  karena  itu dikondisikan sama setiap perlakuan. Lingkungan kultur B. plicatilis yang diharapkan dalam  penelitian  adalah  suhu  antara  26-31  C, salinitas  27-33  ppt,  pH  7,5-8,3  dan  DO ( Dissolved  oxygen )  atau  konsentrasi  oksigen terlarut  4-6,5  ppm  (Cahyaningsih  dkk.,  2010).
Media  pemeliharaan  penelitian  ini  adalah  air laut, Nata de Nanno dimasukkan ke dalam botol air mineral setelah bibit B. plicatilis dimasukkan dengan keadaan diberi aerasi.
Perhitungan  populasi B.  plicatilis diawali  pengambilan  sampel  1  ml,  kemudian dilakukan penghitungan populasi dengan Sedgwick  rafter. Sebelum  pemakaian Sedgwick rafter dan Handtally  Counter dibersihkan  dan dikeringkan  menggunakan  tissue,  kemudian sampel  diteteskan  menggunakan  pipet  tetes sampai  penuh  kemudian  diamati  dibawah mikroskop dengan perbesaran 100x.

## Hasil dan Pembahasan
Hasil  pengamatan  penelitian  pengaruh pemberian  Nata  de  Nanno  dan N.  oculata terhadap populasi B. plicatilis berupa  data rata- rata  populasi B.  plicatilis .  Data  tersebut diperoleh dari pengamatan populasi B.  plicatilis secara  mikroskopik  selama  enam  hari  kultur (Lampiran  6.).  Data  rata-rata  populasi B. plicatilis dapat dilihat pada Tabel 1.
Berdasarkan  Tabel  1.  menunjukkan bahwa hasil analisis varian (ANOVA) pada tiap perlakuan  memiliki  pengaruh  yang  berbeda nyata  (p<0,05)  terhadap  pertumbuhan  populasi B.  plicatilis dengan  pemberian  Nata  de  Nanno dan N. oculata . Karena terdapat perbedaan pada tiap  perlakuan  maka  dilakukan  uji  jarak berganda  Duncan  dengan  derajat  kepercayaan 0,05  untuk  mengetahui  perbedaan  diantara semua perlakuan. Data pertumbuhan populasi B. plicatilis dengan  dapat  dilihat  pada  Tabel  1., sedangkan  grafik  pertumbuhan  populasi B. plicatilis dapat dilihat pada Gambar 9.
Berdasarkan    hasil  uji  jarak  berganda Duncan  pada  hari  pertama  populasi  tertinggi diperoleh  semua  perlakuan,  yaitu  perlakuan  D (5  individu/ml),  E  (4,5  individu/ml),  B  (4,25 individu/ml),  A  (4,25  individu/ml),  F  (4 individu/ml),  dan  C  (3,5  individu/ml)  yang artinya  tidak  berbeda  nyata  (P>0,05).  Hasil  uji jarak  berganda  Duncan  pada  hari  kedua populasi tertinggi diperoleh perlakuan D (17,25 individu/ml) yang  berbeda  nyata  (P<0,05) dengan  perlakuan  A  (14  individu/ml),  B  (11 individu/ml),  C  (7,5  individu/ml),  E  (14 individu/ml),  dan  F  (13,75  individu/ml). Perlakuan  A,  E,  dan  F  berbeda  nyata  (P<0,05) dengan  perlakuan  B,  C,  dan  D.  Populasi terendah  diperoleh  perlakuan  C  yang  berbeda nyata (P<0,05) dengan perlakuan A, B, D, E, F.
Hasil  uji  jarak  berganda  Duncan  pada hari ketiga populasi tertinggi diperoleh perlakuan D  (40  individu/ml)  yang  berbeda nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan  A  (27,75 individu/ml),  B  (24,25  individu/ml),  C  (22,25 individu/ml),  E  (34,75  individu/ml),  dan  F (33,25 individu/ml). Perlakuan A berbeda nyata (P<0,05)  dengan  perlakuan  B,  C,  D,  E,  dan  F. Populasi terendah diperoleh perlakuan B dan C yang  berbeda  nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan A, D, E dan F.
Hasil  uji  jarak  berganda  Duncan  pada hari  keempat  populasi  tertinggi  diperoleh perlakuan  D  (79,25  individu/ml)  yang  berbeda nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan  A  (73 individu/ml),  B  (69,5  individu/ml),  C  (67,5 individu/ml),    E  (75,75  individu/ml)  dan  F  (74 individu/ml).  Perlakuan  E  tidak  berbeda  nyata (P>0,05)  dengan  perlakuan  F,  namun  berbeda
Tabel 1.  Data  Rata-rata  Populasi  Anakan Brachionus  plicatilis dengan  Pemberian  Nata  de  Nanno dan Nannochloropsis oculata Hari Pertama Hingga Hari Keenam Perlakuan Rata - rata Populasi Anakan Brachionus plicatilis (individu/ml) Hari ke 1 2 3 4 5 6 A 4,25 14 b 27,75 c 73 c 83,75 c 75,75 b B 4,25 11 c 24,25 d 69,5 d 79,25 d 66,25 c C 3,5 7,5 d 22,25 d 67,5 d 76,75 d 64,25 c D 5 17,25 a 40 a 79,25 a 98,5 a 86,25 a E 4,5 14 b 34,75 b
75,75 b
94,5 b 77,5 b F 4 13,75 b 33,25 b 74 bc 93,25 b 76,25 b
Keterangan: Superskrip berbeda dalam satu kolom menunjukkan perbedaan yang nyata  (p<0,05). Perlakuan A : pemberian Nata de Nanno 5x10 9 sel/L N. oculata Perlakuan B : pemberian Nata de Nanno 4x10 9 sel/L N. oculata Perlakuan C : pemberian Nata de Nanno 3x10 9 sel/L N. oculata Perlakuan D : pemberian N. oculata 5x10 9 sel/L Perlakuan E : pemberian N. oculata 4x10 9 sel/L Perlakuan F : pemberian N. oculata 3x10 9 sel/L
nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan  A,  B,  C,  dan D. Perlakuan C  berbeda  nyata (P<0,05) dengan perlakuan  A,  B,  D,  E  dan  F.  Populasi  terendah diperoleh  perlakuan  B  dan  C  yang  berbeda nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan  A,  D,  E,  dan F.
Hasil  uji  jarak  berganda  Duncan  pada hari kelima populasi tertinggi diperoleh perlakuan  D  (98,5  individu/ml)  yang  berbeda nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan  A  (83,75 individu/ml),  B  (79,25  individu/ml),  C  (76,75 individu/ml),  E  (94,5  individu/ml),  dan  F  (93,5 individu/ml).  Perlakuan  E  dan  F  berbeda  nyata (P<0,05)  dengan  perlakuan  A,  B,  C,  dan  D. Perlakuan  A  berbeda  nyata  (P<0,05)  dengan perlakuan  B,  C,  D,  E  dan  F.  Populasi  terendah diperoleh  perlakuan  B  dan  C  yang  berbeda nyata (P<0,05) dengan perlakuan A, D, E dan F.
Hasil uji jarak berganda Duncan pada hari keenam  populasi  tertinggi  diperoleh  perlakuan D  (86,25  individu/ml)  berbeda  nyata  (P<0,05) dengan  perlakuan  A  (75,75  individu/ml),  B (66,25  individu/ml),  C  (64,25  individu/ml), E (77,5 individu/ml), dan F (76,25 individu/ml). Perlakuan  A,  E,  dan  F  berbeda  nyata  (P<0,05) dengan  perlakuan  B,  C,  dan  D.  Populasi terendah  diperoleh  perlakuan  B  dan  C  yang berbeda nyata (P<0,05) dengan A, D, E, dan F.
Berdasarkan Gambar 1. dapat diketahui puncak  populasi B.  plicatilis tertinggi  dicapai pada  hari  ke  lima  pada  perlakuan  D  dengan populasi  sebanyak  98,5  individu/ml,  sedangkan puncak  populasi B.  plicatilis terendah  terdapat pada  perlakuan  C  dengan  populasi  76,75 individu/ml.  Fase  adaptasi  terjadi  pada  hari pertama  hingga  hari  ketiga  yang  ditunjukkan dengan jumlah populasi B. plicatilis yang relatif kecil  pada  semua  perlakuan.  Fase  eksponensial terjadi  pada  hari  keempat  dan  kelima  karena
pada  semua  perlakuan  jumlah  populasi B. plicatilis relatif  besar.  Fase  deklinasi  atau kematian  karena  adanya  penurunan  jumlah populasi B. plicatilis terjadi pada hari keenam. Data  kualitas  air  menunjukkan  bahwa nilai  suhu  lingkungan  media  kultur  berkisar antara  27-31°C,  salinitas  media  kultur  31  ppt, pH media kultur 7, DO ( Dissolved oxygen ) atau kadar  oksigen  terlarut  pada  awal,  pertengahan dan  akhir  penilitian  5-8  mg/L  dan  kadar amoniak  pada  awal,  pertengahan  dan  akhir penilitian 0-0,25 mg/L.
B.  plicatilis bersifat filter  feeder yaitu menyaring makanannya berupa partikel-partikel dari  media  tempat  hidupnya. B.  plicatilis membutuhkan  pakan  fitoplankton  berupa N. oculata . Kendala penggunaan pakan N. oculata tidak dapat diberikan berkesinambungan karena
N.  oculata hidup  bergantung  musim.  Hal  ini mendukung  pembuatan  Nata  de  Nanno  yang merupakan natan (endapan) N. oculata kepadatan  tinggi  yang  diendapkan  dengan bahan  kimia  NaOH  teknis  dan  dapat  disimpan selama  satu  minggu.  Penggunaan  Nata  de Nanno  dapat  digunakan  secara  optimal  tidak melebihi  waktu  penyimpanan  selama  satu minggu.  Hal  tersebut  diduga  adanya  pengaruh bahan  kimia  yang  digunakan  pada  saat pembuatan  Nata  de  Nanno  sehingga  dapat disimpan (Sumiarsa, 2010).
Berdasarkan Gambar 1. dapat diketahui bahwa  selama  masa  pemeliharaan  enam  hari puncak  populasi B.  plicatilis tertinggi  dicapai hari ke lima pada perlakuan pemberian pakan N. oculata konsentrasi 5x10 9 sel/L dengan populasi sebanyak  98,5  individu/ml,  sedangkan  puncak populasi B.  plicatilis terendah  pada  perlakuan pemberian  pakan  Nata  de  Nanno  konsentrasi 3x10 9 sel/L dengan  populasi  76,75  individu/ml.
Gambar 1.   Grafik Pengaruh Pemberian Nata de Nanno dan N.oculata terhadap Populasi B. plicatilis
Selama  masa  pemeliharaan  dapat  diketahui bahwa  pada  setiap  hari  puncak  populasi tertinggi didominasi perlakuan pemberian pakan N.  oculata konsentrasi  5x10 9 sel/L  dengan populasi  sebanyak  98,5  individu/ml,  sedangkan puncak populasi B. plicatilis terendah didominasi perlakuan pemberian pakan Nata de Nanno konsentrasi 3x10 9 sel/L dengan populasi 76,75 individu/ml.
Perlakuan pemberian pakan N. oculata konsentrasi  5x10 9 sel/L  menghasilkan  populasi anakan B.  plicatilis tertinggi  pada  hari  kelima dengan  populasi  anakan  98,5  individu/ml. Perlakuan  ini  menggunakan  pakan N.  oculata mampu mencukupi kebutuhan nutrisi,
mendukung  pertumbuhan  secara  optimal  dan diberikan  secara  langsung  kepada B.  plicatilis. B.  plicatilis memakan  pakan  bergerak  lambat seperti N.  oculata (Balai  Budidaya  Laut
Lampung, 2002) dan pertumbuhan perkembangan B.  plicatilis dipengaruhi  oleh ketersediaan pakan (Redjeki, 1999).
Populasi  anakan B.  plicatilis terendah pada perlakuan pemberian pakan Nata de Nanno dengan  konsentrasi  3x10 9 sel/L  menghasilkan populasi anakan 76,75 individu/ml pada hari ke lima.  Hal  ini  diduga  pada  perlakuan  pemberian pakan  Nata  de  Nanno  ini  belum  mencukupi kebutuhan nutrisi dan belum optimal mendukung  pertumbuhan B.  plicatilis. Nata  de Nanno  sebanyak  250  ml  memiliki  kandungan nutrisi  berupa protein 36,12 persen,  lemak 0,03 persen,  karbohidrat  0,255  persen,  dan  air  63,69 persen  sedangkan  kandungan  nutrisi N.  oculata berupa protein sebesar 38,65 persen, lemak 0,49 persen,  karbohidrat  0,048  persen,  dan  air  60,81 persen (Balai Budidaya Laut Lampung, 2002)
Hal tersebut di atas menjelaskan bahwa nilai  nutrisi  Nata  de  Nanno  lebih  rendah dibandingkan  dengan N.  oculata. Terbentuknya natan bentuk gel Nata de Nanno dari N. oculata disebabkan reaksi dinding sel yang tersusun atas selulosa  dengan  NaOH  teknis  pada  pH  tinggi mencapai  10  (Anindiastuti et  al .,  2000). Selulosa merupakan bentuk polisakarida sebagai fotosintesis  dari N.  oculata .  Struktur  rantai selulosa terikat satu sama lain yang menyebabkan  struktur  selulosa  linier.  Gugus OH  dapat  mengikat  air  (H-OH)  atau  gugus  O lain pada rantai selulosa. Kemampuan membentuk ikatan hidrogen ini banyak memegang  peranan  penting  dalam  pembuatan gel. Suatu gel dapat dipengaruhi oleh komponen yang  ditambahkan  seperti  pH  dalam  suasana basa. Struktur gel sangat besar dipengaruhi oleh perubahan pH, terjadinya peningkatan kekentalan dengan meningkatnya pH
(Hermanson,  1982).  Nata  de  Nanno  yang  telah
mengalami  proses  penyimpanan  menghasilkan sel-sel N.  oculata yang  rusak,  karena  adanya kenaikan  nilai  pH  media  mengakibatkan penurunan  jumlah  sel  sehat  saat  pembuatan Nata  de  Nanno  dengan  pH  melebihi  batas toleransi  yaitu  10  (Muliono,  2004).  Kondisi normal N. oculata tumbuh optimal pada kisaran pH  7-8  (Cahyaningsih  dkk.,  2010).  Hal  ini diduga  dapat  mengurangi  nilai  nutrisi  pakan sehingga  tidak  mampu  menghasilkan  sumber energi  untuk  proses  reproduksi  aseksual B. plicatilis sehingga  tidak  menghasilkan  populasi anakan secara optimal (Suprayudi, 2003).
Bahan-bahan kimia pada pakan Nata de Nanno  merupakan  bahan  anorganik  NaOH teknis  mengakibatkan  pH  basa  pada  media, sedangkan bahan organik asam sitrat mengakibatkan pH asam pada media. Penambahan asam sitrat pada proses pengenceran  Nata  de  Nanno  supaya  pH  media menjadi  netral.  Pengunaan  asam  sitrat  baik dalam menjaga kestabilan pH, karena mengakibatkan  penambahan  ion  H + dalam media sehingga menetralkan pH media (Triyono,  2010).  Bahan-bahan  kimia  tersebut dalam  penelitian  ini  tidak  berbahaya  dan  tidak mencemari  media  hidup B.  plicatilis karena selama pemeliharaan B. plicatilis menghasilkan anakan betina dengan jumlah populasi meningkat  dan  tidak  ditemukan  anakan  jantan. Hal tersebut sesuai  dengan pendapat  Marcial et al .  (2005)  yang  menyatakan,  anakan  jantan B. plicatilis dapat  digunakan  sebagai  indikator lingkungan tercemar.
Fase pertumbuhan populasi B. plicatilis dengan  pemberian  pakan  Nata  de  Nanno  dan N.oculata terbagi  atas  tiga  fase  yaitu  : Fase adaptasi  terjadi  pada  hari  pertama  hingga  hari ketiga dengan jumlah populasi B. plicatilis yang relatif  kecil  pada  semua  perlakuan.  Fase eksponensial  pada  hari  keempat  dan  kelima karena  pada  semua  perlakuan  jumlah  populasi B.  plicatilis relatif  besar.  Fase  deklinasi  atau kematian  karena  adanya  penurunan  jumlah populasi B.  plicatilis terjadi  pada  hari  keenam. Fase  dalam  penelitian  ini  sesuai  pendapat Hutagalung  dkk.  (2009)  yang  menyatakan, pertumbuhan B.  plicatilis membentuk  3  fase yaitu: fase adaptasi, fase eksponensial, dan fase deklinasi atau kematian.
Pertumbuhan B. plicatilis selain dipengaruhi  oleh  ketersediaan  pakan  juga dipengaruhi  faktor  lingkungan  seperti  suhu, salinitas,  pH,  DO  ( Dissolved  oxygen )  atau konsentrasi oksigen terlarut, kadar amoniak, dan bahan  kimia  dalam  media  pemeliharaan.  Suhu dalam  penelitian  ini  26-32°C  sesuai  pendapat Isnansetyo  dan  Kurniastuty  (1995)  yang
menyatakan, suhu optimum  untuk pertumbuhan dan  populasi B.  plicatilis antara  22-35°C.
Salinitas  dalam  penelitian  ini  adalah  32  ppt sesuai  pendapat  Isnansetyo  dan  Kurniastuty (1995)  yang  menyatakan,  salinitas  optimum pada  media  pemeliharaan B. plicatilis adalah 10-35  ppt.  Salinitas  dapat  membantu B. plicatilis mempertahankan  tekanan  osmotik supaya  populasi  dapat  optimal  (Martosudarmo, 1990).
Nilai pH  dalam penelitian  ini adalah 7
sesuai pendapat Redjeki (1995) yang menyatakan,  untuk  populasi B.  plicatilis pH optimum  berkisar  antara  7-8.  Kadar  oksigen terlarut  atau  DO  ( Dissolved oxygen )  adalah  5-7 sesuai  pendapat  Balai  Budidaya  Lampung (2002)  yang  menyatakan,  untuk  pertumbuhan populasi B. plicatilis kadar  DO  ( Dissolved oxygen )  atau  konsentrasi  oksigen  terlarut optimum  berkisar  antara  2-7  mg/L.  Kadar konsentrasi amoniak dalam penelitian ini adalah 0-0,25  mg/L  sesuai  pendapat  Yunus  (1990) yang  menyatakan,  untuk  pertumbuhan  populasi B. plicatilis kadar konsentrasi amoniak optimum tidak melebihi 0,1 mg/L.
Data  kualitas  air  di  atas  dapat disimpulkan bahwa nilai suhu, salinitas, pH, DO ( Dissolved  oxygen )  atau  konsentrasi  oksigen terlarut,  dan  bahan  kimia  masih  dalam  kondisi yang  baik  untuk  pertumbuhan  populasi B. plicatilis .  Kadar  konsentrasi  amoniak  pada  hari keenam  dalam  kondisi  yang  kurang  optimal yaitu  0,25  mg/L,  sedangkan  batas  optimum kadar  amoniak  untuk  pertumbuhan B.  plicatilis tidak  melebihi  dari  0,1  mg/L  (Yunus,  1990). Hartanto  dkk.  (2009)    menyatakan,  amoniak dapat  menyebabkan  pertumbuhan B.  plicatilis menjadi lambat.
Kesimpulan
Pemberian Nata de Nanno dan N.oculata sebagai  pakan  dalam  media  kultur berpengaruh  terhadap  populasi  anakan B. plicatilis. Perlakuan pemberian pakan berupa N. oculata 5x10 9 sel/L  menghasilkan  populasi anakan B.  plicatilis tertinggi  sebanyak  98,5 individu/ml.
Berdasarkan  hasil  penelitian,  maka
disarankan menggunakan pakan berupa
N.oculata untuk  kultur B.  plicatilis supaya menghasilkan  pertumbuhan  populasi  anakan B. plicatilis yang tinggi.

## Daftar Pustaka
Aliabbas,  A.  2002.  Kualitas Nannochloropsis sp. Akibat Lama Penyimpanan Nata de Nanno.  Institut  Pertanian  Bogor.  Hal 18-19.
Anindiastuti,  KA  Wahyuni  dan  L  Erawati, 2000. Aplikasi Nata de Chlorella dalam Menunjang Kegiatan Budidaya Perikanan  (makalah  disampaikan  pada pertemuan lintas UPT Direktorat
Jendral  Perikanan  10-14  Juli  2000  di
Bandar  Lampung).  Lampung.  Hal  67- 73. Balai Budidaya Laut Lampung. 2002. Budidaya Fitoplankton dan Zooplanton. Departemen  Perikanan  dan  Kelautan. Lampung. Hal 6, 7, 70-75. Brown,  M.R,  S.W  Jeffery,  J.K.  Volkman  and G.A. Dunstan. 1997. Nutritional Properties of Microalgae for Mariculture. Aquaculutre. P 315-331. Cahyaningsih, S., A.N.M. Muchtar, S.J.Purnomo, I. Kusumaningrum, Pujiati,  A.  Haryono,  Slamet,  dan
Asniar.  2010.  Juknis  Produksi  Pakan Alami.  Balai  Budidaya  Air  Payau Situbondo. 35 hal.
Coutteau,  P.  1996.  Manual  on  the  Production and Use of Live Food for Aquaculture. Rome, FAO. P 7-48.
Chumaidi  dan  Priyadi  1990.  Budidaya  Jasad
Pakan  untuk  Penyediaan  Pakan  Benih Air  Tawar.  Departemen  Pertanian. Jakarta : Puslitbang Perikanan.
Fulks,  W.  and  K.L.  Main.  1991.  Rotifer  and Microalga  Culture  System.  Proceeding of  a  US,  Asia  Workshop,  Honolulu, Hawai. P 3-52.
Hartanto,  N,  T.  Hermawan,  Dikurrahman,  dan S,  Aprianing.  2009.  Budidaya  Ikan Bawal  Bintang  ( Trachinotus  blochii,
Lacepede ). Balai Budidaya Laut Batam. Batam. Hal 53. Hawkins,  R.  L.  &  Nakamura,  M.  1999. Expression of Human Growth Hormone  by  the  Eukaryotic  Alga, Chlorella. Japan. P 35–41. Hermanson,  A.M.  dan  Luciano,  M.  1982.  Gel Characteristis  Water  Binding  of  the Blood Plasma Gels and Methodological  Aspects.  in  Water Binding  of  the  Gel  Suste.  Durham. J.Food Sci.47: 1955-1962. Hutagalung,  R.  A.,  Sutomo    dan  Yohandi. 2009.  Pengaruh  Jenis  Mikroalga  Dan Tingkat Kesadahan Terhadap Pertumbuhan Brachionus rotundiformis . LIPI. Jakarta. Ismi,  S.  1999.  Kultur Nannochloropsis sp. dengan  Intensitas  Cahaya  Berbeda. Universitas Brawijaya, Malang. P  323- 326.
Isnansetyo  dan  Kurniastuty.  1995.  Teknik Kultur Phytoplankton dan Zooplankton Pakan  Alami  Ikan  Untuk  Pembenihan Organisme Laut. Yogyakarta. Hal 14. Kusriningrum.  2008.  Perancangan  Percobaan. Airlangga. Surabaya. Lavens  P.  and  P.  Sorgeloos.  1996.  Manual  on the  Production  and  Use  of  Live  Food for  AquacuLture.    FAO  Fisheries Technical Paper. Rome. P 7–42. Marcial,  S.  Helen,  Hagiwara,  Atsushi.,  Snell, Terry  W.  2005.  Effect  of  Some Pesticides  on  Reproducyion  of  Rotifer Brachionus  plicatilis Muller.  Nagasaki University. Japan. P 569-575. Martosudarmo.  1990.  Petunjuk  Pemeliharaan Kultur  Murni  dan  Massal  Mikroalga.
Proyek Pengembangan Budidaya
Udang. Situbondo.
Muliono.  2004.  Pengaruh  Suhu  dan  Lama Penyimpanan  Terhadap  Kondisi  Sel Nannochloropsis sp.  Institut  Pertanian Bogor. Hal 5-6. Muslim,  A.B.,  Asdari  M.,  S.  Dwi,  dan  Sofiati. 2009.  Pengelolaan  Pakan,  Lingkungan Dan  Pengendalian  Penyakit  Pada Pemeliharaan  Larva  Bawal  Bintang ( Trachinotus  blochii ,  Lecepede).  Balai Budidaya  Air  Payau  Situbondo.  Hal 14. Redjeki, S. 1995. Kultur Rotifer dengan  Sistem Penambahan    Air  pada  Salinitas Berbeda.  Jurnal  Fisheries.  Universitas Riau, Padang. Hal 7-11. Sumiarsa, G. S., dan I. Setiadi. 2010. Perbaikan Teknik  Produksi  Massal  Pakan  Alami untuk  Mendukung  Perbenihan  Ikan Laut.  Balai  Besar  Riset  Perikanan Budidaya Laut Gondol. Bali. Hal 671. Suprayudi,  M.  A.  2003.  Pengaruh  dari  Macam dan  Dosis  Bahan  Pengkaya  Terhadap Kualitas  Nutrisi  Rotifera Brachionus rotundiformis Khususnya n3-Hufa.
Institut Pertanian Bogor. Hal 24-25. Sutomo. 2007. Pengaruh Jenis Pakan Mikroalga yang  Berbeda  Terhadap  Pertumbuhan Populasi Rotifer, Brachionus
rotundifor mis. LIPI. Jakarta.
Triyono,  A.  2010.  Mempelajari  Pengaruh
Penambahan  Beberapa  Asam  pada Proses Isolasi Protein Terhadap Tepung  Protein  Isolat  Kacang  Hijau ( Phaseolus  radiatus  L. ).  Universitas Diponegoro. Semarang. Hal 5. Yunus. 1990. Pengaruh  Kepadatan Tetraselimis chuii terhadap  Perkembangan  Populasi Rotifera.  Jurnal  Penelitian  Budidaya
Pantai.  Balai  Penelitian  Perikanan Bdidaya Pantai Maros, Indonesia.