Jurnal Agroekoteknologi dan Agribisnis, Vol 8 No 1 (Juni 2024): 69–80 P-ISSN 2599-039X E-ISSN 2599-0381

## POTENSI CENDAWAN ANTAGONIS TRICHODERM A VIRIDE

## ISOLAT BOGOR SEBAGAI AGENSI PENGENDALIAN HAYATI PENYAKIT ANTRAKNOSA TANAMAN CABAI MERAH
Antagonist Potential of Bogor Isolate of Trichoderma viride as a Biological Control Agent on Anthracnose Disease of Red Chilli
Arifin Tasrif 1 *, Dwiwanti Sulistyowati 1 , Yuliar 2 , Bayu Adirianto 1 , Endang Krisnawati 1 , Dwi Sugihati 3
1 Jurusan Pertanian, Politeknik Pembangunan Pertanian Bogor, Bogor, Jawa Barat 2 Badan Riset dan Inovasi Nasional (BRIN), Pusat Penelitian Biologi, Cibinong, Jawa Barat 3 Balai Besar Uji Standar Karantina Pertanian , DKI Jakarta
*Korespondensi penulis, E–mail : arifintasrif59@gmail.com Diterima: Januari 2024 Direvisi akhir: Juni 2024 Disetujui terbit: Juni 2024

## ABSTRACT
Anthracnose disease caused by Colletottrichum capsici on chili plants that can damage yields by up to 80%. Control with fungicides has not been able to provide maximum results, because the fungus can move  due  to  water  splashes,  especially  in  the  rainy  season.  The  use  of  antagonistic  fungi  against Colletotrichum  capsici.  has  been  widely  published  but  is  still  limited  to  laboratory  and  greenhouse scales. This study aims to analyze the potential of Bogor isolate Trichoderma viride antagonist fungus against  the  fungus  C.  capsici  through  in-vitro  study  in  the  laboratory,  screen  houses,  and  field conditions. The experiment was structured using Complete Randomized Design (CRD) with parameters that measured respectively the antagonistic ability, and the percentage of attack by C. capsici and the severity of anthracnose disease on chili plants were both tested in screen house condition. Bogor Isolate T.  viride  has  potential  as  a  biological  control  agent  for  chili  plants.  This  is  proven  by  the  ability  to suppress the growth of C. capsici by 71% in vitro. The use of the fungus T. viride with a concentration of 7x10 6 conidia/ml (full strength) can suppress the development of anthracnose by 59 to 87% under screen house conditions. In other words, the pathogenicity of capsici in red chili plants shows a severity level of 13 to 41%.
Keywords : antracnose , Colletotrichum capsici , intensity

## ABSTRAK
Penyakit Antraknosa yang disebabkan oleh Colletotrichum capsici pada tanaman cabai dapat merusak hasil panen buah cabai sampai 80%. Pengendalian dengan fungisida belum mampu memberikan hasil maksimal, karena cendawan Colletorrichum dapat berpindah karena percikan air khususnya di musim hujan. Pemanfaatan cendawan antagonis terhadap C.capsici telah banyak dipublikasikan namun masih terbatas pada skala laboratorium dan rumah kaca. Penelitian ini bermaksud melakukan analsis potensi jamur  antagonis Trichoderma viride isolat  Bogor  terhadap C.capsici melalui  penelitian  in-vitro  di laboratorium, rumah kasa maupun uji lapangan. Penelitian ini bertujuan mengidentifikasi potesi jamur antagonis T. viride yang dapat digunakan sebagai pengendalian hayati penyakit antraknosa dan untuk mengetahui  aspek  budidaya  tanaman  cabai  yang  dapat  menekan  risiko  penyakit  antraknosa  pada tanaman  cabai  merah.  Percobaan  disusun  dengan  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL) dengan paremeter yang diukur kemampuan antagonistik, persentase serangan C.capsici, dan tingkat keparahan  penyakit  antraksnosa  pada  tanaman  cabe.  Cendawan  antagonis T.  viride isolat  Bogor mempunyai potensi sebagai agensia pengendali hayati pada tanaman cabai. Hal ini dibuktikan dengan kemampuan  menghambat  pertumbuhan  cendawan C.capsici sebesar  71%  in  vitro.  Pemanfaatan cendawan T. viride dengan  kepakatan  7x10 6 konidia/ml  dapat  menekan  perkembangan  penyakit
antraknosa sebesar 59% to 87% pada kondisi rumah kasa. Dengan kata lain pathogenitas cendawan C.capsici pada tanaman cabai merah memperlihatkan tingkat keparahan sebesar 13 to 41%. Kata Kunci: antraknosa, Colletotrichum capsici, intensitas

## PENDAHULUAN
Tanaman  cabai  ( Capsicum  annuum L.)  merupakan  salah  satu  jenis  tanaman sayuran  yang  banyak  dikembangkan  di Indonesia.  Cabai  merupakan  salah  satu jenis sayuran penting yang dibudidayakan secara  komersial  di  daerah  tropis. Sulandari  (2004)  melaporkan  berbagai spesies  tanaman  cabai  yang  telah didomestikasi,  namun  hanya Capsicum annuum L.  dan C.  frutescens L.  yang memiliki  potensi  ekonomis.  Selain  itu dikenal  juga  cabai  rawit  yang  merupakan salah  satu  jenis  sayuran  yang  memiliki buah  kecil  dengan  rasa  yang  pedas. Melihat  kebutuhan  cabai  tiap  tahunnya meningkat  sehubungan  dengan  beragam dan  variasi  jenis  masakan  di  Indonesia meningkat yang menggunakan bahan asal cabai, mulai dari kebutuhan rumah tangga, permintaan  pasar,  bahkan  sampai  pada kebutuhan ekspor luar negeri.
Salah satu penyakit pada buah cabai ialah  antraknosa  yang  disebabkan  oleh Colletotrichum spp.  Pembusukan  akibat antraknosa  pada  buah  cabai  akan  terjadi pada  saat  buah  matang  sehingga menyebabkan  penurunan  jumlah  dan kualitas  buah  cabai.  Penyakit  antraknosa disebut  juga  dengan  penyakit  pathek (Herwidyarti et  al .  2013).  Kerugian  hasil karena penyakit antraknosa dapat mencapai 80% apabila kondisi mendukung untuk perkembangan patogen (Than et al.
2008).  Konidium Colletotrichum dapat terpencar oleh angin sehingga penularannya  sangat  cepat  bahkan  dapat merata  pada  lahan  tanaman  cabai. Serangan  patogen Colletotrichum dapat terjadi  pada  tanaman  cabai  fase  vegetatif sampai  menjelang  panen  (Saxena et  al . 2016).
Penelitian sebelumnya telah melaporkan  bahwa  cendawan  antagonis dapat  digunakan  sebagai  agen  hayati terhadap antraknosa pada beberapa buah buahan  dan  sayuran.  Sanothan et  al.
(2023)  melaporkan  bahwa  cendawan Trichoderma harzianum dapat mengendalikan cendawan penyebab antraknosa  pada  tanaman  cabai. T. harzianum dan Gliocladium roseum dapat digunakan sebagai agens hayati terhadap penyebab antraknosa pada tomat (Putranto et  al .  2021).  Lebih  lanjut Dharmaputra et al .  (2015) melaporkan tiga
isolat
cendawan berfilamen ( Plectosphaerella cucumerina , isolat MF2, dan Aspergillus flavus ) serta isolat khamir ( Issatchenkia orientalis ) memiliki kemampuan menghambat pertumbuhan C. capsici BIO  51046  lebih  dari  70%. Penelitian  tersebut  hanya  dilakukan dengan skala in–vitro laboratorium.
Meskipun  pemanfaatan  cendawan antagonis terhadap Collettrotuchum capsici telah banyak dipublikasikan namun masih  terbatas  pada  skala  laboratorium
dan rumah kaca. Sehubungan dengan hal- hal  tersebut,  dipandang  perlu  melakukan penelitian lanjutan dengan melihat berbagai  asal  agensia  yang  berpotensi menjadi  antagonistik  terhadap  patogen penyebab  penyakit  antraknosa  dan pengaruh beberapa aspek budidaya yang dapat menekan tingkat serangan cendawan Colletotricchum  capsici pada tanaman  cabai.  Penelitian  ini  bertujun untuk  menganalisis  potensi  cendawan antagonis T. viride isolat Bogor yang dapat digunakan  sebagai  pengendalian  hayati penyakit  antraknosa  pada  tanaman  cabai merah.

## METODE PENELITIAN

## Waktu danTempat
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium  Penyakit  Tanaman  Balai Besar  Uji  Standar  Karantina  Pertanian (BBUSKP)  dan  Rumah  Kasa  Polbangtan Bogor mulai Februari–Juli  2022.

## Alat dan Bahan
Isolat  cendawan  didapatkan  dari sampel buah cabai merah yang terserang antraknosa  dan  yang  sehat  di  area pertanaman  cabai  di  kebun  percobaan Politeknik Pembangunan Pertanian Bogor. Percobaan di dalam rumah kasa menggunakan  polibag  berisi  tanah  10  kg
(1:1). Bahan kimia yang digunakan adalah Agar Dekstrosa Kentang (ADK),
kloranfenikol, alkohol 70% dan Tween 80. Alat–alat yang digunakan adalah
mikroskop compound,  laminar  air  flow cabinet, dan microwave.

## Pelaksanaan Penelitian
Isolasi antagonis T. viride dan Colletotrichum spp.
Isolasi  antagonis T.  viride dan Colletotrichum spp . dari buah cabai sehat dan  yang  bergejala,  pada  batang  dan daun.  Pengambilan  sampel  dilakukan menggunakan  metode  cawan  tuang  pada medium ADK yang mengandung kloramfenikol  100  mg/l.  Sampel  bagian tanaman  dan gejala  buah  cabai  yang terinfeksi
antraknosa diseka permukaannya  menggunakan  kertas  tisu yang diberi etanol 70%. Selanjutnya buah dibilas dengan akuades steril dan dikering– anginkan. Jaringan kulit dan daging buah di antara  bagian  yang  sakit  dan  sehat dipotong (5 × 5 mm). Sebanyak 5 potongan jaringan  kulit  dan  daging  buah  diletakkan pada  medium  agar  dekstrosa  kentang (ADK)  yang  mengandung  kloramfenikol (100 mg/l) di dalam cawan petri (5 potong per  cawan  petri),  kemudian  diinkubasi pada suhu ruang (28 ± 2 °C) selama 7 hari.

## Permurnian  dan  Identifikasi  Isolat
Cendawan  Antagonis  dan  Cendawan Colletotrichum spp.
Setiap koloni cendawan yang diduga Colletotrichum spp.  dimurnikan  pada medium ADK tanpa kloramfenikol. Sedang cendawan antagonis yang tumbuh bersama  cendawan Colletotrichum spp . selanjutnya dimurnikan dengan
menumbuhkan  ke  cawan  petri  berisi medium ADK lalu diinkubasikan selama 14 hari.  Jenis–jenis  isolat  antagonis  dan Colletotrichum spp. dimurnikan  melalui inokulasi  pada  media  ADK  selanjutnya diinkubasi  pada  suhu  ruang  (28±2  °C) selama  14  hari.  Penelitian  ini  hanya memfokuskan pengujian terhadap cendawan C. capsici.
Isolat  antagonis T.  viride dan  isolat cendawan lainnya yang berpotensi sebagai agen hayati dan tidak patogenik pada cabai kemudian diidentifikasi secara morfologi di Labotratorium  BRIN  dan  Laboratorium Penyakit Tanaman BBUSKP menggunakan metode pustaka (Alamsyah dan  Ali  2019).  Biakan  murni  setiap cendawan  antagonis  dibuat  preparat menggunakan  pewarna  laktofenol  biru untuk  mengamati  ciri  khusus  dengan bantuan mikroskop.
Biakan murni selanjutnya
diperbanyak
untuk penggunaan  lebih  lanjut.  Identifikasi C. capsici menggunakan  pustaka  acuan Kumar et  al .  (2015).  Biakan  murni  setiap isolat Colletotrichum dibuat  preparat menggunakan  pewarna  laktofenol  biru untuk mengamati ciri
khusus
menggunakan mikroskop
Compound dengan  perbesaran  100–400x.  Hasil identifikasi  isolat  cendawan  sebanyak  4 jenis  masing-masing Aspegillus flavus ,
Penicillium sp., T. viride , dan C. capsici.
Uji In-vitro Antagonis T. viride terhadap

## C. capsici
Uji  antagonis  dalam  penelitian  ini dilakukan  dengan  cara  metode  biakan ganda dengan perbandingan 1:1 secara in- vitro  dalam  satu  cawan  konfrontasi  atau modifikasi co-culture  method (Widyastuti 2007). Koloni antagonis T. viride diinokulasikan  dalam  cawan  konfrontasi terlebih  dahulu  sebelum  memasukan koloni C.  capsici dengan  masa  inkubasi selama  7  hari.  Kemudian  isolat  antagonis ditumbuhkan pada cawan konfrontasi pada sisi  yang  berlawanan  dengan  jarak  1  cm dari koloni fungi patogen (Gambar 1). Jari- jari  koloni  dari  kedua  isolat  diukur panjangnya setiap 2 hari sampai hari ke– 14  saat  kedua  isolat  disatukan.  Zona penghambatan  adalah  panjang  wilayah dalam  cawan  konfrontasi  yang  tidak ditumbuhi  oleh  kedua  isolat  yang  saling antagonis.  Pengukuran  dilakukan  dengan cara mengukur panjang dari zona kosong tersebut. Persentase Penghambatan dihitung  dengan  rumus  yang  dipakai Rohana (1998).
𝑃𝑃 = 𝑟 ! − 𝑟 " 𝑟 ! × 100%
Keterangan:
PP : persentase penghambatan r 1 : jari–jari 1 isolat r 1
: jari–jari 1 isolat
Gambar 1. Co-culture methods (Widyastuti 2007)

## Rancangan Penelitian dan Analisis Data
Penelitian  disusun  menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL).
Perlakuan  terdiri  atas  4    jenis  cendawan dan diulang sebanyak 5 kali baik uji in–vitro maupun percobaan di dalam rumah kasa. Data diolah menggunakan SPSS Versi 2.5. Data hasil pengamatan dianalisis menggunakan  Anova  dan  apabila  hasil analisis  menunjukkan  pengaruh  nyata maka  dilanjutkan  dengan  uji  beda  nyata terkecil (BNT) pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Uji Potensi Antagonis T. viride Terhadap Cendawan C. capsici
Hasil kegiatan uji in–vitro dijumpai 3 jenis cendawan antagonistik pada penyakit antraknosa tanaman cabai. Ketiga cendawan  antagosnistik  tersebut  masing- masing Penicillium sp., Aspergillus flavus, dan T. viride (Tabel 1).
Tabel 1 Rataan penghambatan T. viride terhadap isolat yang diuji 14 hari setelah inokulasi (HSI) No Isolat Rerata % penghambatan* 1 Penicillium sp. 62,80 a 2 Aspergirllus flavus 70,12 b 3 Colletotrichum capsici 71,23 b 4 Trichoderma viride . (Control) 79,60 c * Angka yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji BNT 0,1 %
Hasil uji Anova (Tabel 1)
menunjukkan  bahwa  Isolat T.  viride mampu  menghambat  pertumbuhan C. capsici sebesar  62,80–71,23%  14  HST.
Dengan  demikian  cendawan  antagonis T. viride dapat  dijadikan  sebagai  isolat  yang berpotensi  menjadi  agensi  pengendalian
hayati  untuk  menekan  perkembangan penyakit antraknosa pada tanaman cabai. Apabila  dilihat  dari  rataan  kemampuan penghambatan T. viride pada  uji  in-vitro (Gambar  1)  memperlihatkan  bahwa kemampuan penghambatan pada 4 hingga 10 HSI.
Gambar 2 Perkembangan cendawan antagonis dan C. capsici pada 14 HIS Selanjutnya kemampuan
penghambatan isolat T. viride terhadap ke– tiga  isolat  yang  diuji  cenderung  stabil (Gambar  2  dan  3).  Hal  ini  disebabkan karena kecepatan perkembangan isolat T. viride dibandingkan  ke  3  isolat  yang  diuji.
Hasil  uji  in–vitro  isolat T. viride memperlihatkan daya hambat terhadap C. capsici dan Penicillium sp.  mampu menekan  sebesar  71%  setelah  14  HSI. Menurut Muliani et al . (2019), penggunaan Trichoderma spp.  pada  hari  ke–5  mampu menghambat  perkembangan  penyakit antraknosa  pada  tanaman  cabai  rawit ( Capsicum  frustescens L.)  hingga  65%.
Selanjutnya Khairul et al . (2017) melaporkan bahwa bahwa koloni jamur T. viride mampu  menghambat  pertumbuhan dari  koloni  jamur C.  capsici pada  cabai keriting  yang  dilakukan  secara in  vitro dengan rataan persentase penghambatan 2,82% pada hari ke–tiga setelah inokulasi; 70,28%  pada  hari  ke–empat  setelah inokulasi  dan  100%  pada  hari  kelima setelah inokulasi.
Terjadinya penghambatan pertumbuhan Colletotrichum spp.
disebabkan karena Trichoderma mengandung  senyawa capsicari yang dihasilkan  oleh T.  viride berupa  asam harzianic,
alamethicins, tricholin, peptaibols, 6-penthyl-α-pyrone,
massoilactone, viridian, gliovirin,
glisoprenins, asam hiptelidic, trichodermin, dermadin  dan  lain-lain  (Sundari et  al . 2014).  Selanjutnya  Supriati et  al .  (2010) menyatakan  bahwa T.  viride bertindak sebagai  mikroparasit  bagi  cendawan  lain dengan  tumbuh  mengelilingi  miselium patogen. Penghambatan T. viride terhadap C. capsici diduga karena komposisi dinding luar hifa Colletorichum yang menyebabkan patogen ini mudah di degradasi oleh enzim kitinase  (Afrizal et  al .  2013).  Dinding  hifa Colletotrichum memiliki  tekstur  yang terbuat dari kitin (β1,4 N asetilglukosamin) (Purnomo  2010).  Enzim  kitinase  yang dihasilkan  oleh T.  viride ini  menyebabkan dinding  hifa  patogen Colletotrichum spp . terlarut
sehingga menyebabkan
pertumbuhan  patogen  menjadi  terhambat lalu kemudian mati (Lubis et al .  2018).
Ket: T: T. viride ; Cc: Colletotrichum spp compleks; P: Penicillium flavus : A: Aspergillus flavus
Gambar 3 Penghambatan isolat T. viride . terhadap A: Colletotrichum capsici ; B: Penicillium sp.; dan C: Aspergilus flavus 14 HST
Uji  Antagonistik T.  viride terhadap C. capsici Tanaman Cabai di dalam Rumah Kasa.
Hasil  kegiatan  uji  antatagonistk T. viride terhadap C.  capsici pada  tanaman cabai dalam kondisi rumah kasa (Tabel 2) memperlihatkan bahwa  inokulasi T.  viride (perlakuan P2) dengan konsentrasi larutan full  strength dengan  kepadatan  7  x  10 6 kondia/ml mampu memperlihatkan intensitas  serangan C.  capsici sebesar 60%  atau  memperlihatkan  intensitas
serangan  yang  sama  dengan  perlakuan kontrol (P1). Selajutnya inokulasi cendawan  antagonis  dengan  kepekatan half  strength (3,5  x  10 3 konidia/ml),  dan quarter  strength (1,75x10 2 kondidia/ml) menunjukkan intensitas serangan sebesar 60–80% atau dengan kata lain kemampuan cendawan antagonis mampu menghasilkan  20–40%  buah  tanaman cabai terserang (Tabel 2).
Tabel  2 Uji  antagonistic Trichoderma  viride intensitas  serangan  penyakit  antraknosa C. capsica pada tanaman cabai 28 HSI
Perlakuan Konsentrasi inoculum isolat T.viride (konidia/ml) Rataan intensitas serangan (%) P1 (Kontrol) - 40 a P2 (Full Strength) Inokulum cendawan Trichoderma 7x10 6 60 ab P3 (Half Strength) Inokulum cendawan Trichoderma 3,5x10 3 80 bc P4 (Quarter Strength) Inokulum cendawan Trichoderma 1,75x10 2 87 c
* Angka yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji BNT 0,1 %
Tabel  3  memperlihatkan  tingkat keparahaan  penyakit  antraknosa  pada tanaman cabai 28 HSI. Inokulasi cendawan
T.  viride dengan  kekepatan  larutan  7x10 6 konidia/ml  hanya  mampu  menghasilkan keparahan  penyakit  antraknosa  sebesar
13.33%  dan  tidak  berbeda  nyata  dengan perlakuan  P1  (kontrol  negatif).  Dengan demikian, kemampuan cendawan T. viride menekan perkembangan keparahan penyakit  antraknosa  pada  tanaman  cabai sebesar  86,67%.  Selanjutnya  Inokulasi
cendawan T. viride dengan kepakatan 1,75 x 10 2 konidia/ml ( Quarter Strenght ) sampai dengan 3,5 x 10 3 konidia/ml ( Half Strenght ) mampu  menekan  tingkat  keparahan penyakit antraknosa sebesar 58,67 hingga 77,78% (Tabel 3).
Tabel 3 Tingkat keparahan penyakit antraknosa pada tanaman cabai 28 HSI
Perlakuan Konsentrasi inoculum isolat T.viride (konidia/ml) Rerata Tingkat Keparahan Penyakit (%) P1 (Kontrol) - 3,5 a P2 (Full Strength) Inokulum cendawan Trichoderma 7x10 6 13,33 ab P3 (Half Strength) Inokulum cendawan Trichoderma 3,5x10 3 22,22 bc P4 (Quarter Strength) Inokulum cendawan Trichoderma 1,75x10 2 41,33 c
* Angka yang diikuti dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji BNT 0,1%
Gambar  4  memperlihatkan  rataan perkembangan penyakit antraknosa sampai dengan 28 HSI. Perlakuan dengan kepekatan  larutan Quarter  Strength (1,75x10 3 konidia/ml)  dan Half  Strength (3,5x10 2 konidia/ml)  memperlihatkan  tren
peningkatan perkembangan penyakit pada 7  hari  setelah  inokulasi  (HSI)  dan  terus berkembang  secara  eksponensial  sampai dengan 28 HSI dengan tingkat perkembangan penyakit sebesar 22–41%.
Gambar 4 Perkembangan penyakit antraknosa 28 HST pada pada kondisi rumah kasa
Kemampuan  cendawan T.  viride menekan
perkembangan penyakit antraknosa pada kondisi rumah kasa lebih berhasil (tingkat keparahan penyakit 41%)
jika  dibandingkan  dengan  kondisi  lahan terbuka (tingkat keparahan penyakit 100%) diduga  dipengaruhi  oleh  beberapa  faktor seperti  rata-rata  temperatur,  kelembaban
udara dan curah hujan selama pelaksanaan  penelitian.  Selain  itu  jenis media,  kepadatan  inokolum,  dan  metode aplikasi  diduga  memberikan  pengaruh terhadap kemampuan menghambat
Colletrichum spp. Nindya (2018)
melaporkan  bahwa  aplikasi T.  viride dengan  metode  siram  pada  tanah  efektif dalam  menekan  perkembangan  penyakit antraknosa  pada  cabai  dengan  kategori efektifitas  sebesar  91%.  Selanjutnya Nurhidayati et  al .  (2015)  mengemukakan bahwa T.  harzianum dengan  media  air kelapa dan waktu penyimpanan selama 2 bulan mampu memberikan pengaruh nyata terhadap  jumlah  spora,  viabilitas  spora T harzianum dan intensitas penyakit antraknosa ( Colletotrichum sp.) pada cabai besar  di  lapang.  Demikian  pula  Supriadi dan  Jaya  (2016)  mengemukakan  bahwa rerata  nilai  efektivitas  dari  agen  hayati T. harzianum dan  Actinomycetes  >69% menunjukkan kategori sangat baik (Sukamto  2003).  Penambahan  tepung jagung  dalam  media  DKC  meningkatkan populasi Actinomycetes dan T. harzianum , yang diaplikasikan pada tanaman sehingga dapat menghambat perkembangan penyakit  dan  berpengaruh  terhadap keberhasilan pengendalian penyakit antraknosa pada cabai.
Beberapa faktor yang mempengaruhi keberhasilan  aplikasi T.  viride antara  lain waktu aplikasi. Waktu aplikasi harus tepat, misal saat aplikasi cuaca cerah, tidak hujan sehingga  kemampuan T.  viride dalam bekerja  dapat  maksimal.  Penanaman
tanaman  cabai  pada  musim  hujan  juga dapat mendukung perkembangan penyakit untuk berkembang lebih pesat (Sriyanti et al. 2015). Patogen C.capsici pada tanaman cabai  dapat  menurunkan  produksi  hingga 60%. Serta dalam kondisi lingkungan yang optimal  dapat  menyebabkan  petani  gagal panen (Arofahsari 2015). Dalam pengamatan  di  lapang,  perkembangan penyakit antraknosa berbeda-beda penyerangannya.  Menurut  Alfia  dan Hariyadi  (2022)  aplikasi  Trichoderma sp. berpengaruh  berbeda-beda  pada  lapang, hal  ini  disebabkan  karena  kondisi lingkungan, kelembaban, dan juga kandungan hara pada tiap tanah berbeda sehingga  hasil  yang  di  dapat  tidak  sama untuk tiap tempat. Akan tetapi, aplikasi T. viride dalam penelitian ini yang diaplikasikan  lebih  sering  memperoleh hasil  yang  lebih  ringan  dibandingnkan tanpa  aplikasi  Trichoderma  sp,  sehingga pada dasarnya T. viride mampu memberikan  pengaruh  positif  apabila aplikasi tepat, konsentrasi tepat, dan umur T. viride masih produktif atau tidak terlalu lama dan mikroparasit di dalamnya masih efektif.
Hasil  percobaan  uji  antagonistik cendawan T.  viride terhadap C.  capsici penyebab  penyakit  antraknosa  pada tanaman  cabe  dapat  dipertimbangkan untuk  dimanfaatkan sebagai  agensia hayati dengan memperhatikan penyimpanan  isolat,  penggunaan  media tumbuh,  dan  stiker  yang  sesuai  serta efisien dalam pemanfaatannya.

## SIMPULAN
Cendawan Antagonis T. viride isolat Bogor mempunyai potensi sebagai agensi pengendali hayati pada tanaman cabai. Hal ini dibuktikan dengan kemampuan
menghambat  pertumbuhan  cendawan C.capsici
sebesar
71%
in–vitro.
Pemanfaatan  cendawan T. viride dengan kepakatan 7x10 6 konidia/ml dapat menekan perkembangan penyakit antraknosa sebesar 59–87% pada kondisi rumah kasa. Dengan kata lain, patogenitas cendawan C. capsici pada tanaman cabai merah  memperlihatkan  tingkat  keparahan sebesar 13-41%.
Perlu  dilakukan  penelitian  lanjutan dengan  mencari  metode  perbanyakan massal  isolat  cendawan T. viride isolat Bogor yang efisien. Uji lapang pemanfaatan cendawan antagonis T. viride perlu  diulang  dengan  membuat  peneduh, sticker, dan carrier serta media isolat yang sesuai agar lebih melekat dan tidak tercuci karena hujan setelah aplikasi.

## DAFTAR PUSTAKA
Alamsyah  AZ,  Ali  M.  2019.  Uji  daya antagonis  beberapa  isolate  jamur endofit  cabai  merah  terhadap
Colletothricum capsica dan kemampuannya untuk mengendalikan  penyakit  antraknosa pada cabai merah. Jurnal Agroteknologi Tropika . 8 (1): 1–9. Alfia  AD,  Haryadi  NT.  2022.  Pengujian
konsentrasi biofungisida cair
berbahan aktif trichoderma sp. dalam pengendalian  penyakit  antraknosa ( Colletotrichum sp.)  pada  cabai  di lapang. Berkala  Ilmiah  Pertanian .  5 (2): 58–64. DOI: https://doi.org/10.19184/bip.v5i2.288 58
Afrizal,  Marlina,  Susanti  F.  2013.
Kemampuan antagonis Trcihoderma sp. terhadap beberapa jamur patogen in vitro. J. Floratek 8: 45-51.
Available at http//:jurnal.unsyiah.ac.id/floratex/oai
Arofahsari  DN.  2015.  Viabilitas  dan efektivitas  biofungisida  berbahan aktif Trichoderma  harzanium untuk mengendalikan penyakit Rhizoctonia pada  tanaman  kedelai  [skripsi]. Jember:
Program Studi
Agroteknologi  Fakultas  Pertanian Universitas  Jember.  Available  at https//:repository.unej.ac.id
Dharmaputra OS, Ambarwati S, Retnowati I, Nurfadila N. 2015. Mikobiota pada buah  cabai  untuk  pengendalian hayati Colletotrichum capsica. Jurnal Fitopatologi  Indonesia .  11  (5):  150–
158.
DOI: http://doi.org/10.14692/jfi.11.5.150. Herwidyarti  KH,  Ratih  S.,  Sembodo  DRJ. 2013. Keparahan penyakit antraknosa pada cabai. J. Agrotek . 1 (1): 102-106.
DOI: http://dx.doi.org/10.23960/
Khairul  I,  Montong  VB,  Ratulangi  MM.
2017.  Uji  antagonisme T.  viride terhadap colletotrichum capsici
penyebab penyakit antraknosa pada cabai  keriting  secara  in  vitro. Program  Studi  Agroekoteknologi, Jurusan Hama dan Penyakit Fakultas Pertanian, Universitas Samratulangi. Kumar S, Singh V, Garg R. 2015. Cultural and  morphological  variability  in
Colletotrichum capsici causing anthracnose  disease. Int  J  Curr Microbiol App Sci . 4 (2): 243–250.
Lubis JI, Yusriadi, Rizali A. 2018. Uji daya hambat Trichoderma spp.  isolat kabupaten kapuas kalimantan tengah terhadap Colletotrichum spp. pada  cabai.  JTAM  Agrotek  View.
1(3).
Muliani Y., Krestini E., A. Anwar A. 2019.
Uji antagonis agensia hayati Trichoderma spp. terhadap Colletotricum capsici Sydow
penyebab penyakit antraknosa pada tanaman  cabai  rawit Capsicum frustescens L.  Agroscript  1(1):  41  - 50.
Nindya  NS.  2018.  Uji  efektifitas  metode aplikasi  jamur  antagonis T.  viride
terhadap penyakit antraknosa ( Colletotrichum capsica) pada
tanaman cabai ( Capsicum annuum ). Fakultas Pertanian, Universitas Negeri Gorontalo. Skripsi.
Nurhidayati  S.,  A.  Majid  A.,  Mihardjo  PA.
2015. Pemanfaatan biofungisida cair berbahan  aktif T.  viride untuk mengendalikan  penyakit  antraknosa ( Colletotrichum sp.).
Purnomo H. 2010.
Pengantar Pengendalian  Hayati .  Yogyakarta:
CV Andi.
Putranto WA, Nugroho RA, Hardiyanta PS,
Cahyaningrum  DC.  2021.  Are Trichoderma atroviride and Trichoderma harzianum effective  to control Fusarium associated  with tomato wilt? Microbiology Indonesia . 15 (3): 2–2.
Rohana  I.  1998.  Efektifitas  penggunaan
Trichoderma harzianum dan
fungisida mankozeb untuk pengendalian rhizoctonia solani penyebab  penyakit  lodoh  pada Acacia  mangium [skripsi].  Bogor:
Institut Pertanian Bogor.
Sanothan  A,  Montong  VB,  Lengkong  M. 2023. Uji antagonis jamur Trichoderma sp.  terhadap  penyakit antraknosa Colletotrichum sp.  pada tanaman  cabai  keriting Capsicum annuum L. di Laboratorium. JURNAL ENFIT: Entomologi dan Fitopatologi .
3 (1): 15–23.
Saxena  A,  Raghuwanshi  R,  Gupta  VK,
Singh  HB.  2016.  Chilli  anthracnose: The  epidemiology  and  management chilli  anthracnose:  the  epidemiology and  management. Frontiers  in Microbiology . 7: 1–18. doi: 10.3389/fmicb.2016.01527.
Sriyanti NLG, Dewa NS, Ketut S. 2015. Uji keefektifan rizobakteri dalam menghambat  pertumbuhan  jamur Colletotrichum sp. penyebab antraknosa  pada  cabai  merah
( Capsicum annuum
L.).
Agroteknologi Tropika. 4 (1): 53–64.
Sukamto  S.  2003.  Pengendalian  secara hayati  penyakit  busuk  buah  kakao dengan jamur antagonis
Trichoderma  harzianum. Prosiding Kongres  XVII  dan  Seminar  Ilmiah Nasional, Tanggal 6-8 Agustus 2003.
Universitas  Padjadjaran.  Bandung.
Hal:134–13.
Sulandari. 2004. Kajian biologi, serologi, dan analisis  sidik  jari  DNA  Virus penyebab  penyakit  daun  keriting pada cabai [disertasi]. Bogor: Institut Pertanian Bogor.
Supriati  LRB,  Mulyani,  Lambang  Y  2010. Kemampuan antagonisme beberapa isolate T. viride indigenous terhadap Sclerotium  rolfsii secara  in  vitro. J.
Agroscientic . 17 (3): 119–122.
Than PP, Prihastuti H, Phoulivong S. 2008.
Chilli anthracnose disease caused by Colletotrichum species  journal  of Zheijiang  University  Science  B.  9 (10):  764–778.  doi:  10.1631/jzus. B0860007.
Widyastuti  SM.  2007.  Peran Trichoderma spp. dalam Revitalisasi Kehutanan di Indonesia.  Yogyakarta:  Gajah  Mada University Press.