## EKSTRAKSI DAN AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DARI BIJI JAGUNG MANADO KUNING ( Zea mays
L.)
Fitri Santy Budiarso 1) , Edi Suryanto 1) , Adithya Yudishtira 1)
1) Program Studi Farmasi FMIPA UNSRAT MANADO, 95115

## ABSTRACT
This study aims to determinate the the total phenolic, total carotenoids and antioxidant activity of extract of Manado Yellow corn seeds. The study initiated by extracting the powder of corn seed by using Soxhletation  with  several  of  solvents  (hexane,  ethyl  acetate,  buthanol,  and  methanol).  Then  continued with  the  determination  of  the  total  content  of  phenolics  and  carotenoids,  DPPH  radical  scavenging activity and antioxidant capacity by using UV-Vis spectrophotometry method. The results showed that the ethyl acetate extract had the highest total phenolic content followed by butanol, methanol and n-hexane. The  total  phenolic  content  was  149.28;  59.90;  48.16  and  44.08;  mg/kg,  respectively.  The  results  also showed that ethyl acetate extract has the highest carotenoid content, free radical scavenging activity and total antioxidant capacity than butanol, methanol and n-hexane extracts. These results suggest that ethyl acetate extract is very rich in phytochemicals and antioxidant properties.
Keywords : Yellow Manado corn, extraction, antioxidant

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk menentukan total fenolik, total karotenoid dan aktivitas antioksidan dari  ekstrak  biji  jagung  Manado  Kuning.  Penelitian  dimulai  dengan  mengekstraksi  serbuk  biji  jagung menggunakan  metode  sokhletasi  dengan  beberapa  pelarut  (heksana,  etil  asetat,  butanol,  dan  methanol). Kemudian ditentukan kandungan total fenolik, karotenoid, aktivitas penangkalan radikal bebas DPPH dan kapasitas  total  antioksidan  dengan  metode  spektrofotometri  UV-Vis.  Hasilnya  menunjukkan  bahwa ekstrak  etil  asetat  memiliki  kandungan  total  fenolik  tertinggi  diikuti  ekstrak  butanol,  methanol  dan  n- heksana  yaitu  149,28;  59,90;  48,16  dan  44,08;  mg/kg.  Hasil  penelitian  ini  juga  menunjukkan  bahwa ekstrak etil asetat memiliki kandungan total karotenoid, aktivitas penangkalan radikal bebas dan kapasitas total antioksidan tertinggi daripada ekstrak heksana, etil asetat, butanol dan metanol. Hasil penelitian ini menyarankan bahwa ekstrak etil asetat sangat kaya dalam fitokimia dan bersifat antioksidan.
Kata Kunci : jagung Manado Kuning, aktivitas antioksidan

## PENDAHULUAN
Radikal bebas adalah oksidan yang sangat  reaktif,  karena  radikal  bebas merupakan  senyawa  yang  memiliki  satu atau lebih elektron tidak berpasangan pada orbital  luarnya.  Senyawa  tersebut  selalu berusaha  untuk  menyerang  komponen seluler  seperti  lipid,  lipoprotein,  protein, karbohidrat,  RNA  dan  DNA.  (Kesuma et al., 2015). Molekul tersebut bersifat reaktif dalam munculnya berbagai penyakit seperti  inflamasi,  arterosklerosis,  kanker dan  penuaan  dini.  Aktivitas  radikal tersebut  dapat  dihambat  oleh  kerja antioksidan (Mun’im et al., 2008).
Pertahanan dari dalam tubuh seperti enzim-enzim peroksidase, katalase, glutation,  histidine  peptidin  seringkali masih  kurang  akibat  pengaruh  lingkungan dan  hidup  yang  tidak  sehat.  Pada  kondisi ini manusia membutuhkan senyawa antioksidan  yang  diperoleh  dari  makanan (Pietta, 2000). Antioksidan dapat diberikan dalam  sediaan  oral  maupun  topikal. Antioksidan  yang  diberikan  secara  topikal tidak  memberikan  kapasitas  yang  cukup untuk  dapat  diserap  kedalam  kulit, konsekuensinya, aktivitas antioksidan topikal  tidak  dapat  melindungi  kulit  lebih baik  dari  serangan  radiasi  sinar  ultraviolet sendiri  tapi  harus  mempunyai  nilai minimal Sun Protective Factor (SPF) atau kapasitas  sebagai  tabir  surya  (Baumann et al. , 2009).
Jagung  adalah  salah  satu  tanaman pangan yang sering di konsumsi Indonesia dan  menjadi  komiditi  unggulan  dibidang sektor  pertanian  di  Sulawesi  Utara. Menurut  Runtunuwu et  al. (2014)  jagung Manado  Kuning  merupakan  salah  satu varietas unggul  lokal asal  Manado dengan tipe biji flint atau mutiara, jagung Manado Kuning  mengandung  protein  dan  lemak
yang  cukup  tinggi,  yaitu  9,44%  dan 5,01%. Sayangnya jagung Manado Kuning sudah  ditinggalkan  semenjak  tahun  1945 dikarenakan petani lebih merasa diuntungkan  menanam  jagung  hibrida dibandingkan  jagung  Manado  Kuning yang masa panennya lebih lama dibandingkan jagung hibrida.
Suarni et  al.  ( 2010)  melaporkan bahwa  jagung  mengandung  prekursor vitamin  A  atau  karotenoid  dan  vitamin  E. Selain  fungsinya  sebagai  zat  gizi  mikro, vitamin tersebut berperan sebagai antioksidan alami yang dapat meningkatkan imunitas tubuh dan menghambat  kerusakan  degeneratif  sel. Kurangnya  informasi  mengenai  sifat antioksidan tanaman biji jagung khususnya biji  jagung  Manado  Kuning  sebagai tanaman  lokal  di  Manado  penting  untuk diketahui  bila  ingin  menjadikan  jagung sebagai  tanaman  sumber  antioksidan, selain  sebagai  tanaman  pangan.  Potensi antioksidan  pada  ekstrak  biji  jagung Manado  Kuning  dapat  diketahui  dari  uji aktivitas antioksidan. Uji aktivitas antioksidan akan dilakukan dengan menggunakan  metode  DPPH  (1,1-difenil- 2- pikrilhidrazil) dan kapasitas antioksidan . Dalam  uji  ini,  penurunan jumlah  radikal  DPPH  dan  kapasitas antioksidan dapat diukur dengan spektrofotometer UV-Vis.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian dilaksanakan pada bulan November  2016  sampai  bulan  Januari 2017  di  UPT  Laboratorium  Terpadu, Universitas Sam Ratulangi Manado. Bahan yang  digunakan  biji  jagung  Manado Kuning  yang  berumur  ±  90  hari  berasal dari  daerah  Ratahan,  Minahasa  Tenggara.
Bahan  kimia  yang  digunakan  terdiri  dari
pelarut  pro-analisis  (p.a),  seperti  metanol, etanol,  butanol,  etil  asetat,  heksana (EMSURE),  reagen  Folin-Ciocalteu  50%,
1,1-difenil-2-pikrilhidrazil (DPPH), aquades, Na-Carbonat 2%, H 2 SO 4 , Na 3 PO 4 , Ammonium molibdat, asam galat, β-karoten.  Alat  yang  digunakan  adalah alat-alat gelas, mikropipet, spatula, vorteks,  kertas  saring,  ayakan  80  mesh, aluminium foil, timbangan analitik, blender , rotary  evaporator ,  oven  dan spektrofotometer UV-Vis Shimadzu 1800.

## Persiapan sampel
Biji  jagung  dibersihkan  dengan  air yang  mengalir,  kemudian  dikeringkan- anginkan,  digiling  menggunakan blender dan diayak menggunakan ayakan 80 mesh, selanjutnya  ditimbang  sebanyak  20  g sampel.

## Ekstraksi
Sebanyak  20  g  serbuk  kering  biji jagung  dimasukkan  ke  dalam  Sokhlet, kemudian  ditambahkan  pelarut  heksana sebanyak  100  mL.  Ekstraksi  sekuensial dilakukan  dengan  menggunakan  alat Sokhlet  hingga  diperoleh  ekstrak  heksana, tuangkan  ekstrak  heksana  kedalam  labu evaporator  untuk  menghilangkan  heksana sehingga diperoleh ekstrak heksana. Residu  hasil  sokhletasi  diekstraksi  sekali lagi  dengan  100  mL  heksana.  Kemudian ekstrak  heksana  (EH)  digabung  dan disimpan pada suhu ruangan. Dengan cara yang sama, pelarut etil asetat mengekstraksi  residu  (setelah  2  kali diekstraksi  dengan  heksana)  sehingga diperoleh  ekstrak  etil  asetat  (EEA). Kemudian  dengan  pelarut  butanol  dan diperoleh  ekstrak  butanol  (EB).  Terakhir, diekstraksi  dengan  methanol,  sehingga diperoleh ekstrak metanol (EM).

## Penentuan kandungan total fenolik
Kandungan fenolik total ditetapkan dengan  metode  Folin-Ciocalteu  yang dilakukan oleh Lee et al . (2003). Sebanyak 0,1  mL  larutan  sampel  5000  µg/mL dimasukan  ke  dalam  tabung  reaksi  dan ditambahkan  0,1  mL  reagen  Folin- Ciocalteau 50%. Kemudian vorteks kurang lebih  selama  3  menit  dan  ditambahkan  2 mL  larutan  Na2CO3  2%  lalu  divorteks kembali. Selanjutnya campuran diinkubasi selama  30  menit  pada  suhu  ruang. Absorbansi ekstrak dibaca pada spektrofotometer  UV-Vis  dengan  panjang gelombang  750  nm.  Kandungan  total fenolik  dinyatakan  sebagai  mg  ekivalen asam galat mg/mL ekstrak.

## Penentuan kandungan total karotenoid
Penentuan kandungan total karotenoid menurut Oktaviani et al . (2014) dengan  cara  larutan  baku  β-karoten  50 µg/mL  dibaca  serapannya  pada  panjang gelombang  350-550  nm  dan  ditentukan panjang  gelombang  maksimum.  Dibuat kurva  baku  β-karoten  dengan  konsentrasi 5;  10;  15;  20;  25  µg/mL.  Absorbansi diukur pada panjang gelombang maksimum.  Kemudian  Dibuat  sampel 2500 µg/mL kemudian dibaca serapannya. Kadar  β-karoten  dihitung  berdasarkan kurva standar β-karoten.
Penentuan
Aktivitas Antioksidan dengan DPPH
Penentuan aktivitas penangkal radikal  bebas  menurut  Burda  dan  Olezek (2001).  Sebanyak  0,1  mL  masing-masing ekstrak  ditambahkan  dengan  1,5  mL larutan ekstrak 5000 µg/mL, 1,1-difenil-2- pikrilhidrazil  (DPPH)  dalam  etanol  dan divorteks  selama  2  menit.  Berubahnya warna  larutan  dari  ungu  ke  kuning menunjukkan  efisiensi  penangkal  radikal
bebas.  Selanjutnya  pada  5  menit  terakhir menjelang  30  menit  inkubasi,  absorbansi diukur pada  λ  517  nm  dengan menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis. Aktivitas penangkal radikal bebas dihitung sebagai  presentase  berkurangnya  warna DPPH dengan menggunakn persamaan :
Aktivitas penangkal radikal bebas (%) = 1
– x 100%

## Penentuan kapasitas total antioksidan
Total  aktivitas  antioksidan  dari sampel  ditentukan  berdasarkan  metode dari  Prieto et  al .  (1999)  yang  telah dimodifikasi.  Sebanyak  0,3  mL  sampel dicampur  dengan  3  mL  larutan  reagent (asam  sulfat  0,6  M,  Na 3 PO4  26  mM  dan ammodium  molybdate  4  mM).  Reaksi diinkubasi  pada  suhu  90  °C  selama  90 menit  pada  water  bath.  Absorbansi  semua sampel  diukur  pada  panjang  gelombang 695  nm.  Total  aktivitas  antioksidan digambarkan sebagai jumlah asam askorbat.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Ekstraksi
Hasil penelitian menunjukkan bahwa  proses  ekstraksi  sokhletasi  biji
jagung,  diperoleh  ekstrak  heksan,  ekstrak etil  asetat,  ekstrak  butanol,  dan  ekstrak metanol,  berturut-turut  adalah  0,852, 0,164,  0,928    dan  0,489  g  dengan  warna kuning terang, kuning tua, kuning kecoklatan  dan  kuning  muda.  Ekstraksi secara  sekuensial  dilakukan  menggunakan pelarut  berdasarkan  tingkat  kepolarannya pada  sampel  yang  sama.  Senyawa- senyawa yang bersifat non polar cenderung  larut  dalam  pelarut  non  polar sedangkan senyawa-senyawa yang bersifat polar  cenderung  larut  dalam  pelarut  polar. Hal  ini  disesuaikan  berdasarkan  prinsip like  dissolve  like .  Secara  umum  pelarut polar memiliki tetapan konstanta dielektrik yang  tinggi  sedangkan  pelarut  non  polar memiliki konstanta dielektrik  yang  rendah (Suryanto, 2012). Untuk pelarut n-heksana yaitu  pelarut  yang  non  polar  dapat melarutkan  senyawa-senyawa  non  polar seperti  minyak,  streroid  Mono  dan seskuiterpen  (komponen  minyak  atsiri), diterpen  dan  triterpen,  steroid,  flavon polimetoksi, lemak, resin, klorofil. Sedangkan untuk pelarut semipolar seperti etil  asetat  dapat  melarutkan  flavonoid monoglikosida, dan kuasinoid, butanol dan metanol dapat melarutkan senyawa flavonoid  diglikosida,  tanin,  dan  saponin

## Kandungan total fenolik dan karotenoid
Hasil  ekstraksi  biji  jagung  dengan  empat macam  pelarut  (heksan,  etil  asetat,  butanol,
dan  metanol)  dibuat  konsentrasi  5000  μg/mL kemudian  diuji  kandungan  total  fenolik  dan konsentrasi 2500 μg/mL untuk total karotenoid dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel  1.  Kandungan  total  fenolik  dan  karotenoid  ekstrak  yang  diperoleh  dari ekstraksi Soxhlet sekuensial dari biji  jagung.
Ekstrak Total fenolik (mg/kg) Total  karotenoid (mg/100 g ekstrak) EH EEA EB EM 44,08 ± 0,14 a 149,28 ± 0,58 b 59,90 ± 0,29 c
48,16 ± 0,72 d 15,64 ± 0,10 a 76,42 ± 0,20 b
29,92 ± 0,90 c 5,07 ± 0,10 d
Ket: EH= Ekstrak n-heksan, EEA= Ekstrak etil asetat, EB= Ekstrak butanol, EM= Ekstrak metanol
Berdasarkan  pada  Tabel  1.  terlihat jelas  bahwa  kandungan  total  fenolik  dan karotenoid  yang  paling  tinggi  terdapat pada  ekstrak  etil  asetat.  Kepolaran  ekstrak etil  asetat  mendekati  kepolaran  karotenoid jenis xanthophyl dari pada ekstrak butanol, dan ekstrak metanol. Akan tetapi, menurut Gama  (2005),  karotenoid  memiliki  sifat larut  dalam heksan. Komponen karotenoid dapat larut dalam ekstrak pelarut non polar seperti  n-heksan  dan  etil  asetat  sedangkan kelompok  fenolik  dan  flavonoid  larut dalam  pelarut  polar  seperti  ekstrak  etil asetat, butanol, dan metanol.
Kandungan  fenolik  total  ditentukan dengan  menggunakan  pereaksi  Folin– Ciocalteu.  Mekanisme  dari  metode  ini berdasarkan  kekuatan  mereduksi  dari gugus  hidroksi  fenolik.  Adanya  inti aromatis  pada  senyawa  fenol  (gugus hidroksi fenolik) dapat mereduksi fosfomolibdat fosfotungstat menjadi molibdenum  yang  berwarna  biru  (Sudjadi et al. , 2004). Semua fenolik termasuk fenol sederhana  dapat  bereaksi  dengan  reagen Folin–  Ciocalteu  (Huang et  al .,  2005).
Tahap  ini  dilakukan  dengan  tujuan  untuk mengetahui  kandungan  semua  fenol  pada sampel terpilih  dan melihat keterkaitannya dengan  aktivitas  antioksidan  dari  setiap sampel tersebut. Senyawa fenolik mempunyai  berbagai  efek  biologis  seperti aktivitas  antioksidan  melalui  mekanisme sebagai  pereduksi,  penangkap  radikal bebas, pengkhelat logam, peredam terbentuknya singlet oksigen serta
pendonor elektron (Karadeniz et al., 2005).
Berdasarkan metode Oktaviani et al ( 2016),  dibuat  kurva  standar  untuk karotenoid  menggunakan  β-karoten  dan dimodifikasi dengan tambahan kurva lutein dan  di  baca  absorbansi  pada  panjang gelombang  maksimum.  Untuk  β-karoten didapat absorbansi maksimum pada panjang gelombang 450 nm. Data tiap-tiap ekstrak  dihitung  dalam  rumus  persamaan regresi  linear  y=ax  ±b.  Berdasarkan  Tabel 1. dapat diketahui bahwa ekstrak etil asetat biji  jagung  memiliki  kandungan  total karotenoid  yang  paling  tinggi,  diikuti dengan  ekstrak  butanol,  ekstrak  heksan, dan  ekstrak  metanol.  Pelarut  etil  asetat dapat  melarutkan  lebih  banyak  senyawa karotenoid.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa senyawa karotenoid yang terdapat pada biji jagung  merupakan  senyawa  yang  bersifat semipolar  dan  nonpolar.  Brandon et  al. (2008) melaporkan bahwa Jagung mengandung  senyawa  karotenoid  jenis luthein  dan  zeaxanthin.  Lutein  memiliki kelarutan  dalam  etil  asetat  800  mg/L. Adanya  gugus  hidroksil  pada  luthein kelihatan  jelas  lebih  polar  di  bandingkan dengan analognya yang lain yaitu α- dan β- karoten.
Aktivitas Antioksidan ekstrak biji jagung
Aktivitas  antioksidan  dari  ekstrak biji  jagung  dengan  metode  DPPH  dapat dilihat pada Gambar 1. Pengujian aktivitas penangkal  radikal  bebas  dari  ekstrak ekstrak  biji  jagung  dievaluasi  dengan pengujian  radikal  DPPH.  Metode  DPPH merupakan  analisis  untuk  mengetahui aktivitas  antioksidan  menggunakan  DPPH
a b c d e 0 20 40 60 80 100 % in h b is i Ekstrak
(1,1-diphenyl-2-  picylhydrazyl).  Analisis dari  DPPH  digunakan  sebagai  uji  dalam mencari  kemampuan  menangkap  radikal suatu  senyawa  dalam  ekstrak  tumbuhan. Dalam metode ini, DPPH akan mentransfer elektron  atau  atom  hidrogen  ke  radikal bebas  sehingga  menyebabkan  karakter radikal bebas ternetralisasi.
Gambar 1 . Persentase inhibisi ekstrak biji jagung
Aktivitas  antioksidan  disebabkan karena  adanya  senyawa-senyawa  fenolik.
Menurut Nakiboglu et al . (2007) kemampuan  penangkapan  radikal  bebas DPPH  sangat  dipengaruhi  oleh  gugus  OH yang  terdapat  dalam  senyawa  fenolik. Semakin  banyak  gugus  hidroksil  yang tersubstitusi dalam molekul maka kemampuan penangkapan radikal bebasnya  semakin  kuat  karena  semakin banyak atom hidrogen yang dapat didonorkan  (Yu  Lin et  al., 2009). Dari keempat  ekstrak  menunjukkan  ekstrak  etil asetat  memiliki  kemampuan  penghambat radikal  paling  besar  dibandingkan  dengan ekstrak  lainnya  dan  hampir  sama  besar dengan  larutan  control  positif  α-tokoferol 50  µg/mL.  Ekstrak  etil  asetat  juga mengandung  senyawa  fenolik  yang  paling besar.

## Kapasitas total antioksidan
kapasitas  total  antioksidan  ekstrak butanol,  ekstrak  metanol  dan  ekstrak  n- heksan  ekstrak  biji  jagung  dapat  diihat pada Gambar 2:
Gambar 2. Total aktivitas antioksidan ekstrak biji jagung
Uji  aktivitas  antioksidan  pada penelitian ini menggunakan metode fosfomolibdat secara spektrofotometri visibel.  Reagen  fosfomolibdat  merupakan campuran dari asam sulfat pekat, ammonium  molibdat,  dan  natrium  fosfat. Prinsip dari metode ini adalah berdasarkan reaksi reduksi-oksidasi. Fosfomolibdat merupakan  suatu  oksidator  terdiri  atas ammonium  molibdat  dan  natrium  fosfat yang akan membentuk ammonium fosfomolibdat. Pada reaksi dari metode ini didasarkan pada reduksi Mo(VI) ke Mo(V)
terhadap senyawa antioksidan dan terbentuknya  kompleks  hijau  kebiruan fosfat-Mo(V)  pada  pH  asam  dan  yang tinggi  (Zengin et  al, 2010).  Selama  reaksi berlangsung, gugus hidroksil pada senyawa  fenolik  akan  bereaksi  dengan pereaksi foszfomolibdat membentuk kompleks  molibdenum  (V)  yang  berwarna hijau kebiruan dan dapat dibaca serapannya pada spektrofotometri visibel.
Dilihat  dari  gambar  2,  hal  ini menunjukkan  bahwa  ekstrak  etil  asetat
a b c d e 0 50 100 150 200 To tal A kt ivit as A n ti o ks id an Ekstrak
memiliki  kemampuan  tertinggi  dalam mereduksi  reagen.  Warna  hijau  kebiruan yang  terbentuk  akan  semakin  pekat  setara dengan  konsentrasi  ion  fenolat  yang terbentuk, artinya semakin besar konsentrasi senyawa fenolik maka semakin banyak  ion  fenolat  yang  akan  mereduksi molibdenum (VI) menjadi kompleks molibdenum  (V)  sehingga  warna  hijau kebiruan  yang  dihasilkan  semakin  pekat. Perbandingan  dengan  kontrol  positif  α- tokoferol,  Ekstrak  etil  asetat,  ekstrak butanol dan ekstrak metanol memiliki nilai antioksidan  yang  lebih  tinggi  dari  α- tokoferol.

## KESIMPULAN
Dari  hasil  penelitian  diatas  dapat disimpulkan bahwa kandungan total fenolik dan karotenoid  ekstrak biji  jagung Manado  kuning  tertinggi  diperoleh  dari ekstrak  etil  asetat,  dengan  aktivitas penangkal  radikal  bebas  DPPH  sebesar 87,24%,  dan  kapasitas  total  antioksidan sebesar  213,205  mg/kg  dibandingkan ekstrak  heksana,  butanol  dan  metanol. Kandungan  total  fenolik  biji  jagung
Manado Kuning sebanding dengan aktivitas antioksidan.

## DAFTAR PUSTAKA
Baumann,  L.  B.,  S.  Saghari  &  E.
Weisberg, 2009 . Cosmetic Dermatology, Principles and Practice . The Mc-Graw-Hill Medical, New York. Burda S. and Oleszek W. 2001, Antioxidant  and  anti-  in  northern Kyushu, Japan. Jpn. J. Cancer Res. 79,  radical  activities  of  flavonoids.
Journal  of  Agricultural  and  Food Chemistry 49: 2774-2779.
Gama,  J.  J.T.,  Stylos,  C.M.,  2005, Major carotenoid composition of Brazilian  Valencia  orange  juice:
Identification and quantification by
HPLC ,  Department  of  Food  and
Nutrition, FCF-UNESP, Araraquara/SP, Brazil. Huang  D,  Ou  B,  Prior  RL.  2005.  The chemistry behind antioxidant capacity  assays.  J Agricultur  Food Research. 53 : 1841–1856.
Karadeniz,  F.,  Burdurlu,  H.  S.,  Koca,  N. and  Soyer,  Y.  2005.  Antioxidant Activity  of  Selected  Fruits  and
Vegetable Grown in Turkey . Turkey  Journal  of  Agricultural 29 : 297-303
Kesuma  Sayuti  dan  Rina  Yenrina.  2015.
Antioksidan  Alami  dan  Sintetik .
Andalas University Press, Padang.
Lee, K.I.,  Kim,  Y.J., and  Lee, C.H., 2003,
Cocoa Has Mora Phenolic Phytochemical and Higher Antioksidant  Capacity  than  Teas and Red Wine, Journal Agricultural  Food  Chemistry 51 : 7292-7295. Mun’im,  A.,  Azizahwati  dan  Trastianan. 2008. Aktivitas Antioksidan Cendawan  Suku  Pleurotaceae  Dan Polyporaceae Dari Hutan UI. Jurnal Ilmiah Farmasi 5: 36-41. Nakiboglu,  M. Urek, R.O. Kayali, H.A. & Tarhan. 2007. Antioxidant Capacities  Of  Endemic  Sideritis Sipylea  And  Origanum  Sipyleum
From  Turkey. Food  Chemistry.
104 : 630-635.
Oktaviani, T., A. Guntarti, dan H. Susanti. 2014.  Penetapan  Kadar  β-Karoten Pada Beberapa Jenis  Cabe ( Genus Capsicum ) Dengan Metode
Spektrofotometri Tampak. Pharmaciana 4 : 101-109
Pietta  P.  G.,  2000.  Flavonoids  as Antioxidants,  Reviews, Journal Natural Product , 63: 1035-1042.
Prieto,  P.,  Pineda,  M.,  and  Aguilar,  M.
1999. Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: Specific application to the determination of vitamin E.
Analytical  Biochemistry  Journal .
269 : 337-341
Runtunuwu  S.  Pamandungan  Y.,  dan
Mamarimbing R . Eksplorasi Plasma  Nutfah  Jagung  Manado Kuning di Sulawesi Utara. bioslogos journal , 4 : 56-64.
Suarni  dan  Widowati,  S.  2010. Struktur,
Komposisi,  dan  Nutrisi  Jagung. Jagung:  Teknik  Produksi  dan
Pengembangan.  Pusat  Penelitian Dan Pengembangan Tanaman
Pangan. Departemen  Pertanian, Jakarta.
Suryanto  E.  2012. Fitokimia  Antioksidan . Putra Media Nusantara, Surabaya Sudjadi  dan  Rohman,  A.  2004. Analisa
Obat dan Makanan . Pustaka
Pelajar, Yogyakarta.
Yu Lin, H. Kuo, Y.H. Lin, Y.L. & Chiang, W. 2009. Antioxidative Effect And Active  Components  From  Leaves Of  Lotus  ( Nelumbo  nucifera ). Journal  Of  Agricultural  And  Food Chemistry 57 : 6623-6629. Zengin,  G.,  et  al.  2010 ,  Antioxidant Properties  of  Methanolic  Extract and  Fatty  Acid  Composition  of Centaurea  urvillei, Department  of Biology,  Science  Faculty,  Selcuk University, Konya, Türkiye.