ISSN: 1907-9931 (print), 2476-9991 (online)

## PENGARUH PERBEDAAN RENTANG SUHU TERHADAP KEBERHASILAN PEMIJAHAN DAN DAYA  TETAS TELUR  KERANG BULU ( Anadara antiquata )
THE EFFECT OF TEMPERATURE RANGE DIFFERENCES ON SUCCESS OF SPAWNING AND HATCHING RATE OF Anadara antiquata
Lalu Jaye Warse*, Nanda Diniarti, Dewi Putri Lestari
Program Studi Budidaya Perairan Jurusan Kelautan dan Perikanan Universitas Mataram
*Corresponding author e-mail: dwiindah78589@gmail.com
Submitted: 05 Maret 2019 / Revised: 27 Juni 2019 / Accepted: 27 Juni 2019
http://doi.org/10.21107/jk.v12i1.5031

## ABSTRACT
Shellfish is a marine commodity that has high economic value, because the meat has a high nutrient content, even the shell is used for various handicrafts. Fur shells have fairly slow growth. Meanwhile, its presence in nature has declined due to overfishing. One way to maintain the population is to take care in the hatchery sector. The success of spawning, hatching rate and survival rate of fur shellfish are  strongly  influenced  by  many  factors,  one  of  which  is  temperature.  This  study  aims  to  determine the effect of temperature shock (decrease and increase in temperature) on the success of spawning, hatching rate and fur shellfish survival rate (Anadara antiquata). The method used is the experimental method  using  Completely  Randomized  Design  (CRD)  consisting  of  four  treatments  and  three replications namely, P1 (28°C), P2 (30°C), P3 (32°C) and P4 (34°C). The results showed that shock gave  a  significant  effect  on  the  success  of  spawning,  embryo  development  and  hatching  rate  (P <0.05). The highest level of egg hatching was obtained at P2 (30 °C) treatment with a value of 83%, while the lowest value was obtained at treatment P3 (32°C) with a value of 62.33%. However, it did not  have  a  significant  effect  on  larval  survival  rates  with  values  of  P1  (62.33%),  P2  (69%),  P3 (65.33%) and P4 (63.33%), respectively.
Keywords: Shellfish, temperature shock, egg development, hatching rate and survival rate

## ABSTRAK
Kerang  bulu  merupakan  komuditas  laut  yang  bernilai  ekonomis  tinggi,  karena  dagingnya  memiliki kandungan  nutrisi  yang  cukup  tinggi,  bahkan  cangkangnya  dimanfaatkan  untuk  berbagai  kerajinan. Kerang bulu memiliki pertumbuhan yang cukup lambat. Sementara, keberadaannya di alam semakin menurun akibat penangkapan yang berlebihan. Salah satu cara untuk mempertahankan populasinya yaitu  melakukan  penanganan  di  sektor  pembenihan.  Keberhasilan  pemijahan,  hatching  rate  dan survival  rate  kerang  bulu  sangat  dipengaruhi  oleh  banyak  faktor,  salah  satunya  adalah  suhu. Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh  kejut  suhu  (penurunan  dan  penaikkan  suhu) terhadap  keberhasilan  pemijahan,  hatching  rate  dan  survival  rate  kerang  bulu  (Anadara  antiquata). Metode yang digunakan adalah metode eksperimen menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) terdiri atas empat perlakuan dan tiga ulangan yaitu, P1 (28°C), P2 (30°C), P3 (32°C) dan P4 (34°C). Hasil penelitian menunjukkan bahwa kejut memberikan pengaruh yang nyata terhadap keberhasilan pemijahan,  perkembangan  embrio  dan  hatching  rate  (P<0.05).  Tingkat  penetasan  telur  tertingi diperoleh pada perlakuan P2 (30°C) dengan nilai sebesar 83%, sedangkan nilai terendah didapatkan pada  perlakuan  P3 (32°C)  dengan  nilai  sebesar  62.33%.  Namun,  tidak  memberikan  pengaruh  yang nyata terhadapat survival rate larva dengan nilai masing-masing sebesar P1 (62,33%), P2 (69%), P3 (65,33%) dan P4 (63,33%).
Kata kunci: Kerang bulu, kejut suhu, perkembangan telur, hatching rate dan survival rate

## PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang
Kerang  bulu  ( Anadara  antiquata )  merupakan komuditas  laut  yang  bernilai  ekonomis  tinggi, karena  kerang  ini  memiliki  kandungan  nutrisi yang  cukup  tinggi.  Firmansyah  (2005)  dalam Ifa et  al., (2018)  menambahkan  bahwa cangkang  kerang  bulu  juga  dijadikan  sebagai bahan  pembuatan  berbagai  bentuk  kerajinan. Kerang  bulu  memiliki  pertumbuhan  yang cukup  lambat  karena  proses  pemijahannya terjadi  pada  bulan  tertentu.  Sementara  itu, pengambilan kerang  bulu terus-menerus dilakukan oleh
nelayan
tanpa mempertimbangkan  umur  dan  ukurannya, sehingga akan memberi dampak pada penurunan  jumlah  populasi  kerang  bulu  di alam. Upaya yang dilakukan dalam mengantisipasi  terjadinya  kekurangan  stock kerang  bulu  di  alam  yaitu  dengan  sistem budidaya,  salah  satunya  adalah  kegiatan pembenihan.
Oleh  karena  itu,  penelitian  tentang  pengaruh kejut  suhu  yaitu  penaikkan  dan  penurunan suhu  terhadap  keberhasilan  pemijahan  dan daya  tetas  telur  pada  kerang  bulu  ( Anadara antiquata )  perlu  dilakukan,  untuk  mengetahui kemampuan  kerang  bulu  memijah  serta jumlah persentase daya tetas telur dan tingkat kelangsungang  hidup  yang  dihasilkan  pada kerang bulu tersebut.

## 1.2. Tujuan Penelitian
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui pengaruh rentang suhu terhadap keberhasilan pemijahan,  perkembangan  telur,  daya  tetas telur  dan  tingkat  kelangsungan  hidup  kerang bulu ( Anadara antiquata ).

## MATERI DAN METODE
3.1. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Desember  2018.  Penelitian  ini  bertempat  di Balai  Perikanan  Budidaya  Air  Laut  (BPBAL) Sekotong,  Dinas  Kelautan  dan  Perikanan Provinsi  Nusa  Tenggara  Barat,  Kecamatan Sekotong Lombok Barat.

## 3.2. Alat dan Bahan Penelitian
3.2.1. Alat
Alat  yang  digunakan  adalah  yaitu  toples, mikroskop, heater, pH meter, sedgewick rafter, haemocytometer,  refraktometer,  Termometer, keranjang,  pipet  tetes,  plankton  net,  cokrol, Stopwatch, sikat, saringan, senter.

## 3.2.2. Bahan
Bahan  yang  diggunakan  adalah  Induk  kerang bulu ukuran 3-5 cm, air laut, pasir.

## 3.3. Metode Penelitian
Penelitian ini menggunakan metode eksperimental.  Faktor-faktor  lain  di  luar perlakukan dianggap sama (homogen). Rancangan  percobaan  yang  digunakan  pada penelitian ini adalah Rancangan Acak Lengkap  (RAL)  dengan  menggunakan  faktor tunggal  yang  terdiri  dari  4  (empat)  aras perlakuan  dan  3  (tiga)  kali  ulangan.  Adapun perlakuan yang diujikan yaitu:
1. Perlakuan dengan suhu 28ºC sebagai perlakuan kontrol (P1) 2. Perlakuan dengan suhu 30ºC sebagai perlakuan ke dua (P2) 3. Perlakuan dengan suhu 32ºC
sebagai perlakuan ke tiga (P3)
4. Perlakuan dengan suhu 34ºC sebagai perlakuan ke empat (P4)
3.4. Prosedur Penelitian
3.4.1. Tahap Persiapan
a. Pengadaan Induk
Induk  kerang  bulu  yang  digunakan  pada penelitian  ini  diperoleh  dari  perairan  laut Sekotong. Induk yang diperoleh, diseleksi dan dibersihkan dari kotoran, kemudian dipindahkan ke dalam bak fiber yang telah diisi air  laut  bersih  sebanyak  1/3  volume  total  bak dan  dilengkapi  aerasi  sebanyak  4  titik.  Pada dasar  bak  diisi  pasir  secukupnya  sebagai habitat  induk  kerang  bulu  selama  proses pemeliharaan.  Pada  penelitian  ini,  induk dipelihara  selama  3  hari.  Jumlah  total  induk yang  digunakan  yaitu  sebanyak  360  ekor tanpa  diketahui  induk  jantan  dan  betina dengan  ukuran  panjang  cangkang  rata-rata sebesar 3-5 cm. Selama proses pemeliharaan, induk  diberi  pakan  sebanyak  3  kali  sehari. Pakan  yang  diberikan  adalah  pakan  alami berupa  Chaetoceros  sp.  dan  Chlorella  sp. Dengan dosis masing-masing pakan sebanyak 1  liter  dengan  kepadatan  Chaetoceros  sp. Sebesar  3.750.000  sel/ml  dan  kepadatan Chlorella sp. sebesar 6.250.000 sel/ml.

## b. Persiapan Air Media Pemeliharaan
Air  laut  yang  digunakan  sebagai  media pemijahan  dan  penetasan  telur  diperoleh  dari perairan  sekitaran  Balai  Besar  Perikanan Budidaya  Air  Laut  (BPBAL)  Sekotong.  Air yang  digunakan,  sebelumnya  sudah  melalui proses  filtrasi  menggunakan  kain  saring. Kemudian,  suhu  air  distabilkan  menggunakan
heater. Selama proses pemijahan dan pemeliharaan, dilakukan pengukuran parameter  kualitas  air  seperti  suhu,  pH,  DO (oksigen terlarut), dan salinitas.

## 3.4.2. Tahap Pelaksanaan
Adapun tahapan pelaksanaan dalam penelitian ini yaitu :

## a. Pemijahan
Penelitian ini menggunakan metode kejut suhu dengan  perlakuan  kenaikan  dan  penurunan suhu.  Induk  yang  dipijahkan  terlebih  dahulu diberi  pakan  dan  dibiarkan  selama  30  menit. Setelah  itu,  induk  dicuci  dan  dibersikan  dari kotoran  yang  menempel  pada  cangkangnya. Kemudian,  induk  diekspose  selama  30  menit. Sambil  menunggu  proses  pengeksposan, dilakukan persiapan wadah mulai dari pengisian  air  ke  dalam  wadah,  pemasangan aerasi  sampai  dengan  penyetelan  heater sesuai  dengan  suhu  perlakuan.  Kemudian, dilakukan  pengukuran  kualitas  air.  Pada perlakuan kesatu (P1) suhu air dibiarkan tetap normal yaitu suhu 28°C. Pada P2, P3 dan P4, suhu air diturunkan sampai dengan suhu 25°C selama 12 jam. Setelah itu, induk dimasukkan ke  dalam  toples  dengan  kepadatan  30 ekor/toples.  Setelah  12  jam,  kemudian,  suhu air dinaikkan lagi menggunakan heater sesuai dengan  suhu  perlakuan  yaitu  P2  (30ºC),  P3 (32ºC)  dan  P4  (34ºC)  dan  dibiarkan  sampai induk mengalami pemijahan. Setelah memijah, aerasi  pada  bak  pemijahan  dimatikan,  agar telur  dapat  terbuahi  dengan  sempurna.  Telur yang  terbuahi  dan  tidak  terbuahi  dipindahkan pada  wadah  yang  berbeda  dengan  cara  telur disaring  menggunakan  plankton  net  dengan mata  jaring 20 μm,  lalu dimasukkan ke dalam toples  volume  12  liter.  Setelah  itu,  dihitung kepadatan  telur  pada  semua  perlakuan  dan ulangan  sebanyak  1  ml  dan  diamati  di  bawah mikroskop.  Total  telur  dihitung  secara  manual dengan menggunakan hand counter.

## 3.5. Parameter Penelitian
Parameter  utama  dalam  penelitian  ini  adalah pengamatan  morfologi  telur,  kepadatan  telur, perkembangan  embrio,  tingkat  penetasan telur, dan tingkat kelangsungan hidup. Parameter  penunjang  pada  penelitian  ini adalah  pengukuran  kualitas  air  yang  meliputi salinitas, DO dan pH air.

## 3.5.1. Pengamatan Morfologi Telur
Pengamatan  ini  dilakukan  dengan  cara mengambil  sampel  telur  kerang  bulu  yang terdapat pada toples pemijahan menggunakan plankton  net.  Kemudian  dipindahkan  pada wadah  ukuran  yang  lebih  kecil  yaitu  100  ml, tujuannya adalah untuk mempermudah pengamatan sampel telur. Setelah itu, di ambil masing-masing perlakuan dan ulangan sebanyak  masing-masing  1  ml  dan  diletakkan pada  kaca  preparat  untuk  diamati  di  bawah mikroskop.

## 3.5.2. Pengamatan Kepadatan Telur
Pengamatan  ini  dilakukan  dengan  cara, mengambil  sampel  telur  yang  terbuahi  dan tidak  terbuahi  pada  setiap  perlakuan  dan ulangan  masing-masing  sebanyak  100  ml. Kemudian,  sampel  telur  diambil  hanya  1  ml untuk  diamati  di  bawah  mikroskop  dan dihitung  secara  manual  menggunakan  hand counter.  Jumlah  total  telur  yang  didapatkan dicatat,  baik  jumlah  telur  yang  terbuahi maupun  yang  tidak  terbuahi.  Adapun  rumus yang  digunakan  untuk  menghitung  kepadatan telur adalah sebegai berikut:
Keterangan: E : Rata-rata kepadatan telur  (butir/ml) n1-3 : Jumlah telur hasil sampling tiap ulangan (butir/ml) Un : Jumlah ulangan (butir/ml)

## 3.5.3. Pengamatan Perkembangan Embrio
Setelah  terjadi  pembuahan,  masing-masing perlakuan  diamati  perkembangan  telurnya seperti bentuk dan ukuran telur dalam waktu 5 menit/sekali pengamatan. Metode yang digunakan  yaitu  metode  sampling,  yang dilakukan  dengan  mengambil  telur  1  ml  tiap unit  percobaan  dan  ulangan  untuk  diamati  di bawah mikroskop.

## 3.6. Analisis Data
Hasil  perhitungan  daya  tetas  telur  dianalisis menggunakan  sidik  ragam  atau  analisis  of variance  (ANOVA)  pada  taraf  nyata  0.05 dengan  selang  kepercayaan  95%.  Jika  dari data  sidik  ragam  diketahui  bahwa  perlakuan menunjukkan  pengaruh  yang  berbeda  nyata (signifikan),  maka  untuk  melihat  perlakuan yang memberikan berbeda nyata dilakukan uji lanjut  BNT  (Beda  Nyata  Terkecil)  pada  taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1. Pengamatan Morfologi Telur
Pengamatan  morfologi  telur  dilakukan  untuk mengetahui  perbedaan  bentuk  telur  yang terbuahi  dan  tidak  terbuahi.  Telur  yang terbuahi  akan  berbentuk  bulat  dan  berwarna orange,  sedangkan  telur  yang  tidak  terbuahi
berbentuk  oval  dan  tidak  beraturan.  Winanto (2004)  menyatakan  bahwa  telur  yang  belum terbuahi  bentuknya  gak  lonjong  menyerupai buah jeruk, sedangkan telur terbuahi bentuknya  bulat  dengan  diameter  56-65 mikron.  Bentuk  telur  terbuahi  dan  tidak terbuahi  dapat  dilihat  pada  Gambar  1.
(a)                                 (b)
Gambar 1. (a) Telur Terbuahi dan (b) Telur tidak Terbuahi
Menurut  Ode  (2010)  untuk  memastikan  telur terbuahi  atau  belum,  maka  sampel  dilihat dengan  menggunakan  mikroskop,  sekaligus menentukan  kualitasnya.  Telur  yang  telah terbuahi  akan  berada  di  dasar  bak  atau mengendap,  sedangkan  telur  yang  tidak terbuahi akan berada di permukaan air. Telur- telur  yang  terbuahi  disipon  dan  disaring,
kemudian  dicuci  dengan  air  laut  bersih,  lalu dimasukkan kedalam bak penetasan telur.

## 4.2. Pengamatan Kepadatan Telur
Data  hasil  perhitungan  jumlah  telur  yang terbuahi dan yang tidak terbuahi dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Hasil Perhitungan Kepadatan Telur
Berdasarkan hasil perhitungan kepadatan telur menggunakan  Analysis  of  Variance  (ANOVA) didapatkan  hasil  yang  tidak  berbeda  nyata antar perlakuan
(P>0.05). Namun,
berdasarkan
perhitungan
persentase kepadatan telur pada masing-masing perlakuan  diperoleh  hasil  tertinggi  pada perlakuan  P2  pada  suhu  30°C  dengan  total telur  sebanyak  592  butir/ml  dan  terbuahi sebanyak  346  butir/ml  dan  Data  total  telur yang paling sedikit didapatkan pada perlakuan P3  (32°C)  yaitu  sebesar  528  butir/ml  dengan total telur yang terbuahi sebanyak 246 butir/ml dan telur tidak terbuahi sebanyak 282 butir/ml. rendahnya  nilai  total  telur  yang  didapatkan pada  perlakuan  P3 (32°C)  disebabkan  karena suhu  terlalu  tinggi,  sehingga  mengakibatkan permukaan  telur  mengkerut  dan  mati.  Junita, et  al., (2016)  suhu  yang  terlalu  tinggi  atau berubah mendadak dapat menghambat
proses  penetasan  telur  dan  menyebabkan kematian.  Suhu  optimal  yang  baik  untuk proses penetasan berkisar antara 27-30°C.

## 4.2. Pengamatan Perkembangan Embrio
Berdasarkan hasil perhitungan waktu perkembangan embrio menggunakan Analysis of  Variance  (ANOVA)  didapatkan  hasil  yang berbeda  nyata  antar  perlakuan  (P<0.05). Pemijahan  induk  kerang  bulu  terjadi  setelah 45  sampai  65  menit  dari  awal  perlakuan penaikkan suhu yang ditandai dengan terjadinya  reaksi  pergerakan  cangkang  (buka- tutup)  dengan  cepat  dan  menyemburkan cairan  berwarna  putih  kekeruhan  dan  berbau amis.  Pemijahan  kerang  bulu  pada  penelitian ini  tidak  terjadi  secara  serempak  melainkan secara  bertahap.  Induk  kerang  bulu  yang paling  awal  memijah  adalah  pada  perlakuan
P4  (34°C)  dalam  waktu  45  menit,  kemudian diikuti  oleh  perlakuan  P3  (32°C)  setelah  47 menit  kemudian.  Selanjutnya,  disusul  lagi pada  perlakuan  P2  (30°C)  setelah  55  menit. Induk  kerang  bulu  yang  paling  terakhir memijah  adalah  perlakuan  P1  (28°C)  setelah 65  menit  kemudian.  Manoj  dan  Appukuttan (2003)  melaporkan  bahwa  kenaikkan  suhu  air yang lebih  tinggi  memberikan  hasil  yang lebih baik  dari  pada  suhu  yang  lebih  rendah.  Pada perlakuan ini tidak terjadi perubahan lingkungan  yang  signifikan  sehingga  tidak adanya perangsangan, kecuali pada perlakuan  suhu  yang  diberikan.  Menurut Kafuku  dan  Ikenoue  (1983)  dalam  Tomatala (2011),  perubahan  kondisi  lingkungan  dapat mempengaruhi  aktivitas  kerang.  Hal  yang sama  pula  diungkapkan  oleh  Winanto  (2004) bahwa  perlu  adanya  rekayasa  pemijahan  jika secara  alami  kerang  bulu  tidak  memijah  di dalam  wadah  pemijahan.  Selain  karena  suhu, alasan  lain  yang  menyebabkan  kerang  bulu memijah  adalah  ukuran  indukan  yang  telah mencapai  ukuran  matang  gonad.  Satrioajie et al. (2013),  reproduksi  anadara  mencapai kematangan  gonad  seksual  pada  ukuran panjang  cangkang  anterior  hingga  posterior sebesar  1,8-2,0  cm  ketika  umurnya  mencapai enam  bulan.  Induk  yang  digunakan  pada penelitian  ini  telah  mencapai  ukuran  matang gonad  dan  siap  untuk  memijah  yang  ditandai dengan  ukuran  panjang  cangkang  yang  lebih besar dari pada kriteria tersebut yaitu 3-5 cm.

## 1. Fase Pembelahan Sel
Pada  stadia  ini,  pembuahan  telur  yang  terjadi setelah  40-45  menit  setelah  pemijahan.  Telur yang  telah  terbuahi  pada  masing-masing perlakuan dan ulangan mengalami pembelahan  menjadi  2  sel  setelah  45-48 menit.
Kemudian,
telur mengalami pembelahan lagi menjadi 4 sel setelah 1 jam-1 jam 48 menit pada perlakuan P1 (28°C), pada perlakuan  P2  (30°C)  terjadi  pembelahan setelah  telur  berumur  1  jam  10  menit, perlakuan  P3  (32°C),  terjadi  setelah  telur berumur  1  jam-1  jam  17  menit  dan  perlakuan P4  (34°C)  setelah  telur  berumur  1  jam-1  jam 40  menit. Telur-telur kerang bulu dari masing- masing  perlakuan  dan  ulangan  akan  terus mengalami
pembelahan  sel  membentuk  fase  morulla. Fase ini terjadi setelah telur berumur 2 jam 58 menit  sampai  dengan  3  jam  12  menit  pada perlakuan  P1  (28°C),  pada  perlakuan  P2 (30°C) terjadi setelah berumur 2 jam 52  menit sampai  dengan  3  jam,  perlakuan  P3  (32°C) tejadi  setelah  telur  berumur  3  jam  sampai dengan  3  jam  14  menit  dan  perlakuan  P4 (34°C)  terjadi  setelah  telur  berumur  2  jam  50 menit  sampai  dengan  3  jam  22  menit.  Fase morulla  ditandai  dengan  telur  berbentuk seperti  bunga  kol.  Menurut  Ode  (2010)  fase morulla  mulai  terbentuk  setelah  telur  berumur ±  2,5  jam.  Ciri  khas  fase  ini  ditandai  dengan telur  berbentuk  seperti  bunga  kol.  Selain  itu, ditandai  dengan  berkembang  silia-silia  kecil yang berfungsi membantu pergerakkan. Bentuk perkembangan telur mulai dari pembuahan  sampai  dengan  fase  morulla dapat dilihat pada Gambar 2.
a                                       b
c                                       d
Gambar 2. Fase pembelahan sel : (a) pembuahan (1 sel), (b). 2 sel, (c) 4 sel, dan (d) morulla

## 2. Fase Blastula
Stadia  blastula  mulai  terbentuk  setelah  telur berumur 3 jam 25 menit sampai dengan 3 jam 33  menit  pada  perlakuan  P1  (28°C),  pada perkuan  P2  (30°C)  terjadi  setelah  4  jam sampai  dengan  4  jam  15  menit,  selanjutnya perlakuan  P3  (32°C)  terjadi  setelah  telur berumur 3 jam 48 menit sampai dengan 4 jam
dan perlakuan P4 (34°C) terjadi setelah 3 jam 17 menit sampai dengan 3 jam 25 menit. Fase ini  ditandai  dengan  adanya  pergerakan memutar.  Menurut  Ode  (2010)  fase  blastula dicapai setelah larva berumur 3,5 jam di mana gerakkannya aktif berputar- putar. Bentuk telur memasuki  fase  blastula  dapat  dilihat  pada Gambar 3.
Gambar 3. Fase Blastula

## 3. Fase Gastrulla
Stadia  ini  mulai  terbentuk  setelah  telur berumur 7 jam sampai dengan 7 jam 36 menit, pada  perkuan  P2  (30°C)  terjadi  setelah  7  jam 52  menit  sampai  dengan  8  jam  15  menit, perlakuan  P3  (32°C)  terjadi  setelah  telur berumur 7 jam 39 menit sampai dengan 8 jam 25  menit  dan  perlakuan  P4  (34°C)  terjadi setelah  7  jam  19  menit  sampai  dengan  7  jam 32  menit.  Fase  ini  ditandai  dengan  ciri  yaitu dapat  bergerak  menggunakan  silia.  Menurut
Dody  (2012)  seletah  melewati  fase  multi-sel, perkembangan  embrio  selanjutnya  menuju fase  gastrula  setelah  telur  mencapai  ±  7  jam, dimana  secara  perlahan  organ  silia  mulai terbentuk akibat getaran silia yang dimilikinya, maka  embrio  dalam  kapsul  senantiasa berputar,  baik  searah  jarum  jam  maupun sebaliknya. Ukuran tubuh embrio pada fase ini telah  m encapai  216  μm  dan  mulai  memasuki fase  trokofor.  Bentuk  telur  memasuki  fase gastrulla dapat dilihat pada Gambar 4.
Gambar 4. Fase Gastrulla

## 4. Fase Trocofor
Stadia  ini  terjadi  setelah  telur  berumur  8  jam 40 menit sampai dengan 8 jam 55 menit pada perlakuan  P1  (28),  pada  perkuan  P2  (30°C) terjadi setelah 9 jam 30  menit sampai dengan 10  jam  10  menit,  perlakuan  P3  (32°C)  terjadi setelah  telur  berumur  8  jam  55  menit  sampai dengan  9  jam  24  menit  dan  perlakuan  P4
(34°C)  terjadi  setelah  8  jam  33  menit  sampai dengan  8  jam  55  menit.  Menurut  Hamzah (2013)  stadia  trocopor  terbentuk  setelah  telur berumur  7-9  jam  yang  ditandai  dengan terbentukknya granula setelah pembelahan sel terakhir  dan  dapat  bergerakmemutar  dengan menggunakan  silia.  Bentuk  telur  memasuki fase trocopor dapat dilihat pada Gambar 5.

## 5. Fase Larva-D (veliger)
Pada  fase  larva  D  (veliger),  terjadi  setelah berumur  20  jam  sampai  dengan  20  jam  35 menit,  pada  perlakuan  P2  (30°C)  terjadi setelah  23  jam  45  menit  sampai  dengan  24 jam,  perlakuan  P3  (32°C)  terjadi  setelah  telur berumur  23  jam  15  menit  sampai  dengan  23 jam  23  menit  dan  perlakuan  P4  (34°C)  terjadi setelah  berumur  23  jam  sampai  dengan  23 jam  12  menit.  Menurut  Hamzah,  (2013)  fase veliger  ditandai  dengan  larva  berbentuk seperti  huruf  D,  garis-  garis  ensel  (hinge) mulai  tampak  setelah  berumur  20-24  jam. Winanto  dan  Dhoe  (1998)  dalam  Winanto (2004) menambahkan bahwa larva yang sehat
dicirikan oleh aktifitas gerak, distribusi dengan warna  bagian  perutnya.  Larva  yang  sehat tampak  bergerak  aktif  berputar  dengan menggunakan silianya, mereka akan menyebar  merata  terutama  di  bagian  lapisan permukaan  dan  tengah,  sedangkan  yang berada  di  bagian  bawah  kondisinya  kurang baik karena bersifat fototaksis positif terhadap cahaya. Secara mikroskopis, larva yang sehat akan  aktif  memburu  pakan  sehingga  bagian perut  berwarna  kuning  tua,  larva  yang  cukup makan  perutnya  berwarna  kuning  muda. Bentuk  telur  memasuki  fase  larva-D  (veliger) dapat dilihat pada Gambar 6.
Gambar 6. Fase Larva-D (veliger)
Data  hasil  perhitungan  persentase  waktu perkembangan  embrio  kerang  bulu  dapat dilihat pada Gambar 7.
Gambar 7. Grafik Persentase Waktu Perkembangan Embrio
Berdasarkan  grafik  di  atas,  diperoleh  hasil bahwa, perlakuan yang paling cepat mengalami perkembangan dari fase pembuahan sampai fase larva D (veliger) yaitu pada  P1(28°C)  dengan  jumlah  waktu  selama 1222.66 menit dan perlakuan paling lama yaitu pada  P2  (30°C)  dengan  jumlah  waktu  selama 1435  menit.  Tingginya  jumlah  waktu  yang dibutuhkan untuk perkembangan embrio pada P2 (30°C ) diduga karena pengaruh suhu yang cukup tinggi.

## KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang  telah dilakukan  mengenai  pengaruh  suhu  yang berbeda terhadap daya keberhasilan pemijahan  kerang  bulu  ( Anadara  antiquata ) menunjukan kesimpulan sebagai berikut:
1.  Perlakuan kejut suhu
yang memberikan  pengaruh  yang  nyata terhadap keberhasilan pemijahan
kerang dan durasi tahap perkembangan embrio kerang bulu.
2.  Perlakuan  kejut  suhu  yang  berbeda berpengaruh  nyata  terhadap  daya tetas  telur  kerang  bulu.  Daya  tetas telur tertinggi diperoleh pada perlakuan  P2  (30°C)  sebesar  83%, dan  terendah  terjadi  pada  P3  (32°C) sebesar 62,33%.
3.  Perbedaan  suhu  tidak  berpengaruh nyata (non signifikan) terhadap kelangsungan hidup kerang bulu, yaitu dengan  nilai  rerata  masing  perlakuan sebesar  P1  (62,33%),  P2  (69%),  P3 (65,33%) dan P4 (63,33%).

## 5.2. Saran
Saran penelitian ini adalah:
1.  Diharapkan
pada penelitian selanjutnya  mengamati  keberhasilan pemijahan,  kelangsungan  hidup  tidak hanya  sampai  pada  perkembangan larva,  tetapi  sampai  pada  fase  kerang dewasa.2. Diharapkan pada penelitian selajutnya dilakukan perhitungan dosis  pakan  yang  akan  diberiakan  ke dalam  bak  pemeliharaan  induk  yang akan dipijahkan.

## DAFTAR PUSTAKA
Afiati,  N.  (2007).  Gonad  maturation  of  two
intertidal blood clams Anadara granosa (L.)  and Anadara  antiquata (L.)( Bivalvia:  Arcidae )  in  Central  Java. Journal  of  Coastal  Development, 10 (2), 105-113.
Amalia,  D.  R.  (2010).  Rekrutmen  Populasi Kerang  Darah  (Anadara  granosa)  Di Perairan  Pesisir  Banten.Departemen
Manajemen Sumberdaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan.Institut Pertanian Bogor. Bogor : Journal of Coastal
Development ISSN : 1410 – 5217.
Arnanda,  A.  D.,  Ambariyanto,  A.,  &  Ridlo,  A.
(2005). Fluktuasi Kandungan Proksimat  Kerang  Bulu  (Anadara inflata  Reeve)  di  Perairan  Pantai Semarang. Ilmu  Kelautan:  Indonesian Journal of Marine Sciences, 10 (2), 78- 84.
Awaluddin,  M.,  Yuniarti,  S,  L.,  Mukhlis,  A. (2013).  Tingkat  Penetasan  Telur  dan Kelangsungan  Hidup  Larva  Kerang Mutiara  ( Pinctada  maxima )  pada Salinitas  yang  Berbeda.  Program Studi  Budidaya  Perairan.  Universitas Mataram  : Jurnal  Kelauta,  6 (2), ISSN:1907-9931.
Awang-Hazmi,  A.  J.,  Zuki,  A.  B.  Z.,  Noordin, M. M., Jalila, A., & Norimah, Y. (2007). Mineral  Composition  of  the  Cockle (Anadara  granosa)  Shells  of  West Coast of Peninsular Malaysia and It? s Potential  as  Biomaterial  for  Use  in Bone  Repair. Journal  of  Animal  and Veterinary Advances, 6 (5): 591-594.
Baron,  J.  (1992).  Reproductive  cycles  of  the bivalva  molluscs Atactodea  striata (Gmelin), Gafarium  tumidum  Roding and Anadara  scapha (L.)  in  New Caledonia. Marine  and  Freshwater Research, 43 (2), 393-401.
Diana,  A.N.  (2010).  Embriogenesis  dan  Daya Tetas  Telur  Ikan  Nila  ( Oreochromis niloticus )  Pada  Salinitas  Berbeda. Skripsi .  Jurusan  Budidaya  Perairan.
Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan. Universitas Airlangga. Surabaya.
Dody,
S. (2012). Pemijahan dan perkembangan  larva  siput  gonggong ( Strombus  turturella ). J.  Ilmu  dan Teknologi  Kelautan  Tropis,  1 (4),  107- 113.
Gratischa  VHL  Maani,  Bahtiar,  dan  Abdullah.
(2017).  Aspek  Biologi  Reproduksi Kerang  Bulu  ( Anadara  antiquata )  Di Perairan  Bungkutoko  Kota  Kendari Provinsi  Sulawesi  Tenggara.Jurusan Manajemen  Sumberdaya  Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Halu Oleo. Sulawesi
Tenggara : Jurnal Manajemen Sumber
Daya Perairan, 2 (2): 123-133 Goal, L, N, N. (2017). Perbandingan Morfometri  Kerang  Bulu Anadara antiquata Di  Belawan  dan  Tanjung Pura Sumatera Utara. Skripsi . Fakultas  Biologi.  Universitas  Medan Area. Medan.
Hamzah,  A.  S.  (2014).  Budidaya  Kerang Mutiara (Pictada maxima) The Golden and Silver Pearl pada Keramba Jaring Apung  di  Perairan  Nusantara. Skripsi .
Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Universitas Hallo Oleo. Kendari.
Hamzah,  M.  S.  (2013).  Intensitas  Cahaya Lampu  Pijar Terhadap Perkembangan Embriogenesis  Dan  Kelangsungan Hidup Larva Kerang Mutiara ( Pinctada Maxima ). Jurnal  Ilmu  dan  Teknologi Kelautan Tropis, 5 (2) 391-400.
Hamzah,  M.  S.  (2016).  Dinamika  Suhu  dan Salinitas  Media  Pemeliharaan  Larva untuk  Produksi  Kualitas  Benih  Kerang Mutiara  ( Pinctada  maxima ).  Tesis. Program  Doktor  Ilmu  Perikanan  dan Kelautan.
Universitas Brawijaya, Malang: 131 hal. (in Press.).
Harramain,  Y.  H.  M.  (2008)  Kajian  Faktor Lingkungan  Habitat  Kerang  Mutiara Stadia  Spat  di  Pulau  Lombok  Nusa Tenggara  Barat. Skripsi .  Program Studi  dan  Ilmu  Teknologi  Kelautan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan.
Institut Pertanian Bogor.
Hendriana.  A.  (2015).  Pembenihan  dan Pembesaran Abalon ( Haliotis squamata ) Di Balai Perikanan
Budidaya Laut Lombok, Lombok Barat,  Nusa  Tenggara  Barat. Skripsi . Teknologi  Produksi  dan  Manajemen
Perikanan Budidaya Program Diploma
Institut Pertanian Bogor.
Hidayati N. (1994). Eksploitasi Kerang ( Anadara sp)  yang  Diletakkan  Di Tempat  Pelelangan  Ikan  Unit  Kerang Desa Rawameneng, Kecamatan Blanakan,  Kabupaten  Subang,  Jawa Barat. Skripsi . Departemen Pemanfaatan  Sumberdaya  Perikanan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan.Institu Pertanian Bogor. Jawa Barat. Hutangalung,  J.,  Alawi,  H.,  Sukendi.  (2016). Pengaruh suhu dan Oksigen Terhadap Penetasan Telur dan Kelulushidupan Awal Larva Ikan
Pawas ( Osteochilus hasselti ). Fakultas Perikanan  dan  Kelautan.  Universitas Riau. Jurnal  Kelautan  dan  Perikanan . Hlm. 1-13.
Ifa,  L.,  Akbar,  M.,  Ramli,  A.  F.,  &  Wiyani,  L.
(2018). Pemanfaatan Cangkang Kerang dan Cangkang Kepiting sebagai  Adsorben  Logam  Cu,  Pb  dan Zn pada Limbah Industri Pertambangan  Emas. Journal  Of Chemical  Process  Engineering,  3 (1), 33-37.
Insafitri, I. (2010).
Keanekaragaman, Keseragaman, Dan Dominansi Bivalvia  Di  Area  Buangan  Lumpur Lapindo  Muara  Sungai  Porong. Jurnal Kelautan: Indonesian Journal of Marine Science and Technology, 3 (1), 54-59.
Islami,  M,  M.  (2013).  Pengaruh  Suhu  dan Salinitas  Terhadap  Bivalvia. Jurnal Oseana,  38 (2),  1 –  10.  ISSN  0216- 1877.
Ismail,  E.  (2012).  Kesesuaian  Faktor  Fisika, Kimia  dan  Biologi  Perairan  Untuk Budidaya  Tiram  Mutiara  Di  Teluk Semangka,  Kabupaten  Tanggamus Provinsi  Lampung. Skripsi .  Program Pasca  Sarjana.  Universitas  Terbuka. Jakarta.
Kotta,  R.  (2018).  Teknik  Pembenihan  Tiram Mutiara  ( Pinctada  maxima ).  Pusat Penelitian  Oseanografi  LIPI,  Jakarta. Stasiun  Penelitian  Ternate. Prosiding Seminar  Nasional  Kemaritiman  dan Sumberdaya Pulau-pulau Kecil (KSP2K) II, 1 (2) : 228- 244.
Manoj  Nair,  R.,  &  Appukuttan,  K.  K.  (2003). Effect of temperature on the development,  growth,  survival  and settlement  of  green  mussel  Perna viridis  ( Linnaeus ,  1758). Aquaculture Research, 34 (12), 1037-1045. Mayunar,  I.  A,  dan  Purwanto  B.  E.  (1995). Kondisi Perairan Teluk Banten Ditinjau dari  Beberapa  Parameter  Fisika- Kimia  serta  Kaitannya  dengan  Usaha Budidaya. Prosiding  Perikanan  Pantai Bojonegara-Serang . 61-67 hlm.
O'Connor,  W.  A.,  &  Lawler,  N.  F.  (2004). Salinity  and  temperature  tolerance  of embryos  and  juveniles  of  the  pearl oyster,  Pinctada  imbricata  Röding.
Aquaculture, 229 (1-4), 493-506.
Ode,  I.  (2010).  Pengamatan  Pemijahan  dan Perkembangan  Larva  Tiram  Mutiara ( Pinctada maxima ) dalam Bak Terkontrol.  Fakultas  Perikanan  dan Ilmu Kelautan. Universitas Darussalam  Ambon. Jurnal  Bimafika
2 , 86 – 89.
Olsson. (2011). Kedudukan kerang bulu dalam sistimatika hewan diklasifikasikan.
Skripsi . Fakultas Perikanan dan
Kelautan. Institut Pertanian Bogor. Prihatini,  W.  (2014).  Ekobiologi  Kerang  Bulu Anadara Antiquata Di Perairan Tercemar Logam Berat. Jurnal Teknologi Pengelolaan Limbah, 16 (3). Putri,  R.  E.  (2005).  Analisa  Populasi  dan Habitat Sebaran Ukuran dan
Kematangan  Gonand  Kerang  Lokan ( Batisa  violancae )  di  Muara  Sungai Anai  Padang,  Sumatera  Barat. Tesis
Sekolah Pasca Sarjana Institut
Pertanian Bogor.
Satrioajie,  W.  N.,  Anggoro,  S.,  &  Irwani,  I.
(2013).  Karakteristik  Morfometri  dan Pertumbuhan  Kerang  Bulu Anadara pilula (Characteristic  of  Morphometric and  Growth  of Anadara  pilula ). Ilmu
Kelautan: Indonesian Journal of Marine Sciences, 18 (2), 79-83. Savitri,  D.  E.,  Afifah,  W.,  Pursetyo,  K.  T., Boneka,  F.,  Eradiaty,  F.  (2015).
Panduan Penangkapan dan Penanganan  Perikanan  Kerang .  Edisi
1. WWF-Indonesia. Jakarta.
Setyono,  D.  E.  D.  (2006).  Karakteristik  biologi dan  produk  kekerangan  laut. Jurnal Oseana, 31 (1), 1-7.
Southgate,  P  and  Lucas,  J.  (2008). The  Pearl Oyster. Elsevier . Amsterdam.
Sujoko,  A.  (2010). Membenihkan  Kerang Mutiara . Insan Madani. Yogyakarta.
Sutaman.  (1993). Tiram  Mutiara:  Tehnik Budidaya  dan  Proses  Pembuatan Mutiara . Penerbit Kanisius. Yogyakarta: 93 hal.
Tomatala, P. (2011). Pengaruh Suhu Terhadap  Pemijahan  Kerang  Mutiara (Pinctada maxima). Teknologi Budidaya Perikanan. Politeknik Perikanan Negeri Tual. Jurnal Perikanan  dan  Kelautan  Tropis,  7 (1).
Hlm. 1-3.
Wardana,  I.  K.,  Sembiring,  S.  B.  M.,  & Mahardika, K. (2013). Aplikasi perbaikan manajemen dalam
perbenihan  tiram  mutiara  ( Pinctada Maxima ). Media Akuakultur, 8 (2), 119-
126.
Wardana,  K.  I.,  Sudewi,  Muzaki,  A.,  Moria  B.
S.  (2014).  Profil  Benih  Tiram  Mutiara
( Pinctada maxima ) Dari Hasil Pemijahan  yang  Terkontrol.  Balai
Besar  Penelitian  dan  Pengembangan Budidaya  Laut  Gondol.  Bali. Jurnal Oseanologi Indonesia, 1 (1), 1-6. Winanto, T. (2004). Memproduksi Benih Tiram Mutiara  (Pinctada  maxima) .  Penebar
Swadaya. Jakarta. 95 Hlm. Yusran.  (2014).  Identifikasi  Keanekaragaman Jenis Kerang (Bivalvia) Daerah Pasang  Surut  Di  Perairan  Pantai Pulau  Gosong  Sangkalan  Aceh  Barat Daya. Skripsi. Program Studi Perikanan  Fakultas  Perikanan  dan Ilmu Kelautan Universitas Teuku Umar
Meulaboh. Aceh.

## DAFTAR TABEL
Tabel 1. Hasil Perhitungan Kepadatan Telur
Tabel 2. Perhitungan Waktu Perkembangan Telur

## DAFTAR  PERHITUNGAN PERHITUNGAN HASIL KEGIATAN
1.  Kepadatan Telur

## DAFTAR GAMBAR HASIL PENGAMATAN