## PERFORMA HEMATOLOGI DAN KUALITAS AIR BUDIDAYA IKAN PATIN
(Pangasius sp.) YANG DIBERI BAKTERI FOTOSINTETIK

## (Rhodobacter sp. dan Rhodococcus sp.)
Hematological Performance and Water Quality of Catfish Culture (Pangasius sp.) Treated with Photosynthetic Bacteria (Rhodobacter sp. and Rhodococcus sp.)
Adi Suriyadin 1* , Muhammad Haikal Abdurachman 1 , Muh. Fahruddin 1 , Heri Murtawan 1 , Muhammad Aidil Huda 2
1 Program Studi Ilmu Perikanan, Fakultas Ilmu dan Teknologi Hayati, Universitas Teknologi Sumbawa
2 Program Studi Akuakultur, Sekolah Tinggi Perikanan dan Kelautan Matauli
* Corresponding author : adi.suryadin@uts.ac.id

## ABSTRAK
Ikan  Patin  ( Pangasius sp.)  adalah  salah  satu  jenis  ikan  air  tawar  yang  bernilai ekonomis  penting  dalam  industri  perikanan  budidaya.  Namun  proses  budidaya  intensif dengan  padat  tebar  tinggi  yang  disertai  dengan  pengelolaan  air  yang  tidak  baik,  dapat menurunkan kualitas air sehingga mengakibatkan stres dan kesehatan ikan terganggu. Oleh karena  itu  penelitian  penggunaan  bakteri  fotosintetik  ( Rhodobacter sp.  dan Rhodococcus sp.)  pada  kolam  budidaya  ikan  patin  bertujuan  untuk  memperbaiki  kondisi  kualitas  air. Rancangan yang digunakan yaitu rancangan acak kelompok, dengan dua perlakuan dan satu kontrol  dan  masing-masing  perlakuan  tiga  ulangan:  A  =  0,2  ml/l,  B  =  0,5  ml/l,  dan  C  = Kontrol (tanpa bakteri fotosintetik). Hasil penelitian menunjukan bahwa pemberian bakteri fotosintetik  pada  kolam  budidaya  ikan  patin  berpengaruh  baik  terhadap  proses  perbaikan kualitas air, yang ditunjukan dengan optimalnya nilai kualitas air yaitu parameter suhu, pH, oksigen  terlarut  dan  adanya  penurunan  nilai Total  Organic  Matter yang  disebabkan  oleh adanya proses bioremediasi yang dilakukan oleh bakteri fotosintetik.
Kata Kunci: Bakteri fotosintetik, hematologi, kualitas air, Pangasius sp.

## ABSTRACT
Catfish (Pangasius sp. ) is a type of freshwater fish that has important economic value in the aquaculture industry. However, the intensive cultivation process with high stocking densities, accompanied by poor water management, can reduce water quality, resulting in stress and disturbed fish health. Therefore research on the use of photosynthetic bacteria (Rhodobacter  sp.  and  Rhodococcus  sp.)  in  catfish  culture  ponds  aims  to  improve  water quality conditions. The design used was a randomized block design, with two treatments and one control and three replications for each treatment: A = 0.2 ml/l, B = 0.5 ml/l, and C = control  (without  photosynthetic  bacteria).  The  results  showed  that  the  application  of photosynthetic  bacteria  to  catfish  culture  ponds  had  a  good  effect  on  the  process  of improving water quality, which was indicated by the optimal water quality values, namely the parameters of temperature, pH, dissolved oxygen and a decrease in the value of Total Organic  Matter  caused  by  the  bioremediation  process  carried  out  by  photosynthetic bacteria.
Keywords: Photosynthetic bacteria, hematology, water quality, Pangasius sp.
Jurnal Ilmu-ilmu Perikanan dan Budidaya Perairan Volume 18, Nomor 1, Juni 2023: 24-32 https://jurnal.univpgri-palembang.ac.id/index.php/ikan

## PENDAHULUAN
Ikan patin ( Pangasius sp.) adalah salah  satu  primadona  ikan  konsumsi  air tawar  (Lukistyowati,  2012).  Ikan  patin memiliki  rasa  daging  yang  enak,  lezat, dan  gurih.  Selain  itu,  ikan  patin mengandung sumber protein yang tinggi dan  rendah  kolesterol.  Menurut  Kordi (2010), saat ini banyak masyarakat yang membudidayakan ikan patin tidak hanya untuk  memenuhi  keperluan  keluarga, akan tetapi dijadikan sebagai bisnis untuk meningkatkan pendapatan.
Maka  dari  itu,  untuk  menjawab permintaan  pasar  yang  tinggi  dilakukan pemeliharaan  atau  budidaya  secara intensif  dengan  padat  tebar  dan  aplikasi atau  pemberian  pakan  yang  tinggi. Namun  dalam  proses  budidaya  intensif dengan  padat  tebar  tinggi  yang  disertai dengan  pengelolaan  air  yang  tidak  baik, secara  nyata  dapat  menurunkan  kualitas air  sehingga  mengakibatkan  stres  dan terjadi  gangguan  kesehatan  pada  ikan. Sisa pakan yang tidak termakan dan juga sisa-sisa  metabolisme  ikan  menjadi penyebab  terjadinya  penurunan  kualitas air  pada  saat  proses  pemeliharaan.  Oleh sebab itu, berbagai pihak telah membuat suatu  kontrol  biologis  (probiotik)  yang berhubungan  erat  dengan  terjadinya penurunan kualitas air sehingga mengakibatkan gangguan terhadap kesehatan ikan.
Menurut  Mansyur  &  Tangko (2008), penerapan probiotik pada budidaya  bertujuan  untuk  mengelola kualitas  air  dengan  proses  biodegradasi, dan menjaga keseimbangan mikroorganisme dan pengendalian terhadap  bakteri  penyebab  penyakit  atau patogen.  Aplikasi  probiotik  pada  media budidaya juga diharapkan mampu memperbaiki kualitas air dengan
mengurai sisa pakan yang tidak termakan dan sisa metabolisme pada dasar perairan.
Probiotik yang mampu memperbaiki kualitas air dan lingkungan salah satu diantaranya adalah jenis bakteri
fotosintetik (Trisna et al., 2013). Bakteri fotosintetik  bersifat  fototrofik,  yaitu mampu  bertahan  hidup  pada  linkungan oksigen  rendah  dan  memanfaatkan cahaya  matahari  untuk  merangsang membran fotosistem dalam proses fotosintesisnya.  Donor  elektron  yang dimanfaatkan  oleh  kelompok  bakteri  ini adalah  senyawa  organik  atau  anorganik berupa  H 2 S,  nitrit,  Fe  dan  amonia (Widiyanto, 2001). Penggunaan  bakteri  fotosintetik
( Rhodobacter sp.  dan Rhodococcus sp.) pada kolam budidaya ikan patin ( Pangasius sp.) bertujuan untuk memperbaiki  kondisi  kualitas  air  yang tercermin  dari  profil  hematologi  ikan patin meliputi eritrosit, leukosit, hematokrit dan hemoglobin.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  ini  dilakukan  pada bulan  September  –  November  2019  di CV.  Tirto  Bumi  Agung,  Desa  Karang Dagangan,  Kecamatan  Bandar  Kedung Mulyo,  Kabupaten  Jombang,  Provinsi Jawa  Timur.  Pengujian  hematologi  pada penelitian ini dilakukan di Laboratorium Pathologi  Klinik  Fakultas  Kedokteran Hewan  Universitas  Airlangga  Surabaya. Sedangkan  parameter  kulaitas  air  yang diukur  adalah  suhu,  pH, Dissolved Oxygen (DO)  dan Total  Organik  Matter (TOM). Alat  yang  digunakan  dalam peneltian  ini  meliputi  spuit,  tabung EDTA, Mindray BC-3200 Auto Hematology  Analyzer, erlenmeyer,  pipet tetes, gelas ukur, Spectrophotometer, pH meter  dan  DO  meter.  Bahan  yang digunakan meliputi ikan patin, darah ikan patin, pakan ikan dan bakteri fotosintetik ( Rhodobacter sp. dan Rhodococcus sp.). Penelitian  ini  dilakukan  pada kolam budidaya ikan patin berumur enam bulan  dengan  berat  rata-rata  ikan  400 gram/ekor. Kolam penelitian yang digunakan  yaitu  kolam  budidaya  ikan
patin, berjumlah sembilan kolam, dengan luas  400  m 2 dan  kedalaman  200  cm. Benih  yang  digunakan  yaitu  benih  yang berasal  dari  Bogor,  dengan  padat penebaran awal 20 ekor/m 2 .
Metode percobaan
yang digunakan  pada  penelitian  ini  yaitu rancangan  acak  kelompok  (RAK),  yang terdiri atas dua perlakuan dan satu kontrol dengan  masing-masing  perlakuan  tiga ulangan. Dosis perlakuan yang digunakan adalah: A = 0,2 ml/l bakteri fotosintetik. B = 0,5 ml/l bakteri fotosintetik. dan C = Kontrol (tanpa bakteri fotosintetik).
Perlakuan  probiotik  pada  kolam budidaya  dilakukan  setiap  hari  dengan frekuensi  yaitu  satu  kali  tepatnya  jam 08.00  WIB.  Proses  pengambilan  darah pada penelitian ini yaitu dengan pengambilan  melalui  jantung  dengan menggunakan  syringe,  kemudian  darah dimasukkan  dalam  tabung Ethylene Diamine Tetra Acetat (EDTA) agar tidak membeku atau sebagai antikoagulan, lalu dilakukan  pengujian  di  Laboratorium. Sedangkan  parameter  kualitas  air  diukur langsung dilapangan, prosedur pengukuran atau pengamatan kualitas air adalah sebagai berikut :
Pengukuran  Suhu  dan  Dissolved Oxygen
Pengukuran suhu dan DO dilakukan dua kali sehari yaitu pada pukul 06.00  dan  pukul  17.00  WIB,  dengan menggunakan  satu  alat  yaitu  DO  meter, cara pengukurannya yaitu dengan melakukan kalibrasi terlebih dahulu pada alat  sensor,  kemudian  mencelupkan  alat sensor ke dalam kolam budidaya dengan jarak 20 cm dari dasar kolam. Selanjutnya mengamati  dan  mencatat  hasilnya  yang tertera  pada  monitor  alat  hingga  angka tetap dan tidak berubah ubah.

## Pengukuran pH
Pengukuran  pH  dilakukan  dua kali  sehari  yaitu  pada  pukul  06.00  dan pukul 17.00 WIB, dengan menggunakan alat pH meter, cara pengukurannya yaitu
dengan  melakukan  kalibrasi  terlebih dahulu  pada  alat  sensor  pada  pH  meter dengan  cairan  kalibrasi  (baffer  pH  7) hingga  nilai  pada  monitor  menunjukan angka  7,0.  Kemudian  mencelupkan  alat sensor pH ke dalam air sampel atau kolam uji dua sampai tiga menit hingga monitor menunjukan  angka  tetap  dan  tidak berubah  lagi,  kemudian  catat  hasilnya yang tertera pada monitor pH meter.

## Pengukuran  Total  Organic  Matter (TOM)
Pengukuran TOM dilakukan dengan  cara  pengenceran  pada  sample dengan  menggunakan  Aquades  kedalam Erlenmeyer. Siapkan 1 buah blanko dan 2 standarisasi, kemudian ditambahkan KMNO 4 10 ml dan H 2 SO 4 6 N 5 ml pada sampel,  tambahkan  50  ml  Aquades, KMNO 4 10 ml dan H 2 SO 4 6 N 5 ml pada blanko  dan  tambahkan  50  Aquades  dan H 2 SO 4 6  N  5  ml  pada  standarisasi. Selanjutnya dipanaskan hingga mendidih dengan  menggunakan  heater  kuning dengan  suhu  440  °C  atau  heater  putih dengan  suhu  330  °C,  Setelah  mendidih tunggu  selama  10  menit  kemudian diangakat dan ditambahkan Asam oksalat (H 2 C 2 O 4 )  10  ml  hingga  warnanya  akan berubah  menjadi  putih.  Kemudian  titrasi dengan  menggunkan  KMNO 4 hingga warna berubah pink pertamakali.
Kemudian  catat  hasilnya  (hasil  titrasi sample  –  hasil  titrasi  blanko)  x  standard KMNO 4 x pengenceran.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Uji Hematologi
Dalam sirkulasi darah ikan secara umum terdapat sel darah dan cairan yang disebut  plasma.  Pengujian  hematologi ikan merupakan proses pemeriksaan yang bertujuan untuk mengetahui kelainan dari kuantitas  dan  kualitas  sel  darah  serta mengetahui perubahan yang terjadi pada plasma  darah  yang  terutama  berperan pada proses pembekuan darah. Pemeriksaan  hematologi  pada  penelitian ini  meliputi  kadar  hematokrit,  eritrosit,
hemoglobin, trombosit dan leukosit. Data hasil  pengamatan  hematologi  ikan  patin yang  meliputi  hematokrit,  eritrosit, hemoglobin,  trombosit  dan  leukosit disajikan pada Tabel 1.

## Hematokrit
Hematokrit merupakan gambaran prosentase sel darah merah dalam darah, yang  merupakan  perbandingan  antara volume  darah  dan  plasma  darah.  Saat terjadi  luka  pada  tubuh  ikan,  dapat menyebabkan penurunan nilai hematokrit,  nilai  hematokrit  sejalan dengan fluktuasi eritrosit (Wahjuningrum et al., (2008).
Berdasarkan hasil penelitian, nilai hematokrit pada perlakuan 0,2 ml/l masih
dalam  kondisi  normal  jika  dibandingkan dengan  kontrol  dan  perlakuan  0,5  ml/l (Tabel  1).  Namun  nilai  hematokrit  pada perlakuan  0,5  ml/l  dan  kontrol  tidak menunjukan  adanya  gejala  stress  dan anemia.
Menurut Affandi & Tang (2002), kisaran  kadar  hematokrit  normal  pada ikan  patin  berkisar  30%-44%.  Kadar hematokrit  yang  lebih  rendah  atau dibawah  dari  22%  menunjukan  bahwa ikan  akan  mengalami  anemia  dan kemungkinan terinfeksi penyakit, sedangkan  bila  persentase  hematokrit diatas normal menunjukkan ikan mengalami stress.
Tabel 1 . Hasil Uji Hematologi
Hematologi Perlakuan A B C Hematokrit (%) 30,00±1,52 28,66±0,88 29,00±0,57 Eritrosit (x 10 6 /mm 3 ) 2,40±0,10 2,40±0,11 2,63±0,18 Hemoglobin (g/dL) 7,13±0,43 7,30±0,11 7,33±0,50 Trombosit (x 10 3 /mm 3 ) 302,33±11,83 320,00±6,11 298,00±5,56 Leukosit (x 10 3 /mm 3 ) 40,26±2,88 36,66±2,81 40,86±1,98

## Eritrosit
Menurut  Guyton  (1997),  fungsi atau  kegunaan  utama  eritrosit  yaitu membawa hemoglobin yang mengandung oksigen dari sistem pernapasan atau paru- paru ke dalam jaringan. Berdasarkan hasil penelitian,  nilai  rerata  eritrosit  pada perlakuan  dan  kontrol  menunjukan  nilai eritrosit  yang  masih  dalam  kondisi normal  (Tabel  1),  namun  nilai  eritrosit pada  kontrol  sedikit  lebih  tinggi  dari perlakuan yaitu (2,63x10 6 /mm 3 ). Menurut Putra (2015), bahwa kadar nilai eritrosit normal ikan patin  yaitu berkisar antara 2,0-3,0x10 6 /mm 3 .
Emu  (2010)  beserta  Yanto et  al., (2015),  menyatakan  bahwa  faktor  yang mempengaruhi total eritrosit yaitu faktor spesies,  ukuran,  aktivitas  fisik,  umur, jenis  kelamin  perbedaan  induk,  nutrisi
pakan, dan kualitas air seperti kekurangan oksigen.  Selain  itu,  jumlah  eritrosit  juga dipengaruhi  oleh  faktor  fisiologis  dan perubahan  lingkungan  budidaya  (Vonti, 2008).

## Hemoglobin
Hemoglobin (Hb) darah berkaitan erat  dengan  eritrosit,  dan  berfungsi sebagai  pengikat  oksigen  dan  digunakan untuk  proses  katabolisme  sehingga menghasilkan  energi.  Berdasarkan  hasil penelitian,  nilai  Hb  pada  perlakuan  dan kontrol  menunjukan  nilai  yang  normal (Tabel 1). Menurut Hastuti & Subandiyono (2011), konsentrasi hemoglobin  normal  pada  ikan  patin berkisar antara 7-9 g/dL.
Besar  kecilnya  jumlah  Hb  dalam eritrosit  menunjukan  bahwa  kapasitas
pengangkutan oksigen oleh darah, sehingga  perbedaan  kadar  Hb  berkaitan juga  dengan  kondisi  kualitas  air  media pemeliharaan  ikan.  Selain  itu  tingginya kandungan
ammonia dapat mengakibatkan terganggunya proses transfer  oksigen  dalam  darah  sehingga metabolisme  tubuh  ikan  tidak  berjalan dengan baik, maka energi yang dihasilkan berkurang. Lagler et al., (1977),
menyatakan  bahwa  secara  fisiologis  Hb berperan  terhadap  tingkat  kekebalan tubuh ikan hal ini disebabkan oleh faktor daya angkut oksigen oleh darah.

## Trombosit
Trombosit merupakan sel pembeku darah. Berdasarkan hasil
penelitian,  nilai  tombosit  perlakuan (Tabel  1)  lebih  tinggi  dibandingkan kontrol  yaitu  (298,00±5,56  x  10 3 /mm 3 ). Tombosit berfungsi dalam proses pembekuan  darah,  hal  ini  dikarenakan trombosit ikut serta dalam mengaktifkan protrombin menjadi thrombin, kondisi ini mempengaruhi  darah  pada  ikan  cepat membeku  atau  lebih  kental  (Hastuti, 2004).

## Leukosit
Leukosit  adalah  sel  darah  putih dan berperan sangat penting dalam sistem kekebalan  tubuh  atau  imum.  Maftuch et al., (2012),  menyatakan  peningkatan jumlah  sel  darah  putih  dipengruhi  oleh reaksi dari peningkatan daya tahan tubuh ikan.  Berdasarkan  hasil  penelitian,  nilai leukosit  pada  perlakuan  dan  kontrol (Tabel  1),  masih  menunjukan  nilai  yang normal.  Menurut  Dopongtonung  (2008), bahwa  jumlah  sel  leukosit  normal  pada ikan patin yaitu 20-150x10 3 /mm 3 . Leukosit  berkaitan  erat  terhadap  sistem imun  atau  sistem  kekebalan  tubuh  dan bertanggung  jawab  untuk  memusnahkan benda-benda  asing  atau  yang  dianggap berbahaya seperti bakteri dan virus.
Menurut  Suryati  (2010),  bahwa ikan  dengan  kondisi  fisik  ysng  sehat memiliki  sel  leukosit  lebih  rendah
dibandingkan dengan ikan yang terinfeksi bakteri atau sakit. Menurunnya jumlah sel leukosit  dikarenakan  adanya  aktifitas untuk memusnahkan sel bakteri atau virus yang  menginfeksi  tubuh  ikan.  Selain  itu ikan  yang  mengalami  stress  atau  sakit yang ditimbulkan oleh perubahan kondisi lingkungan  atau  infeksi  bakter  juga memperlihatkan respons kenaikan jumlah sel leukosit (Hastuti, 2004).

## Kualitas Air
Hasil analisis statistik data kualitas  air  untuk  parameter  suhu,
potensial  hydrogen (pH), Dissolved Oxygen (DO), dan Total Organic Matter (TOM) disajikan pada Tabel 2.

## Pengukuran Suhu
Suhu merupakan parameter kualitas  air  yang  sangat  berpengaruh terhadap  laju  pertumbuhan,  metabolism, nafsu makan dan sintasan ikan. Berdasarkan hasil pengukuran suhu pagi dan  sore  hari  pada  perlakuan  0,2  ml/l berkisar antara 28,43-29,85 o C, perlakuan 0,5  ml/l  28,42-30,02 o C  dan  kontrol 28,52-30,08 o C.  Data  suhu  air  selama penelitian menunjukan nilai yang cenderung stabil atau masih berada dalam kondisi  normal  untuk  budidaya  ikan patin.  Hasil  ini  sesuai  dengan  perndapat yang  dikemukanan  oleh  Munisa et  al.
(2015),  bahwa  suhu  optimal  untuk budidaya ikan patin yaitu berkisar antara 25-32 o C.

## Pengukuran pH
Nilai pH merupakan faktor keseimbangan  antara  asam  dan  basa dalam  perairan  budidaya.  Berdasarkan hasil  pengukuran  pH  pagi  dan  sore  hari menunjukan fluktuasi nilai pH lebih stabil pada  perlakuan  0,2  ml/l  dan  0,5  ml/l dibandingkan  dengan  kontrol  (Tabel  2). Pada kontrol fluktuasi nilai pH cenderung merapat antara pagi dan sore hari, hal ini menunjukan  bahwa  kadar  keasaman kolam  budidaya  cenderung  lebih  tinggi, walaupun ada proses fotosintesis
plankton. Menurut Effendi (2003), bahwa bagian  kecil  dari  bahan  organik  dapat termanfaatkan  oleh  ikan  sebanyak  10%, sedangkan  sisanya  di  ubah  menjadi karbondioksida  dan  air  melalui  proses respirasi spesies yang dibudidayakan dan biota  lainnya.  Fluktuasi  nilai  pH  dari perlakuan  pemberian  bakteri  fotosintetik di  dalam  air  cenderung  menstabilkan pertumbuhan  plankton  di  siang  hari selama  proses  fotosintesis  berlangsung dan  mencegah  perjadinya  konsumsi oksigen  di  malam  hari  karena  bakteri
fotosintetik  tidak  memerlukan  oksigen sebagai nutrient hidupnya tetapi memerlukan komponen lain non oksigen seperti  nitrogen  dan  senyawa  organik seperti H 2 S, nitrit dan amonia (Widiyanto, 2001).
Namun  demikian,  dari  ketiga perlakuan,  dapat  dilihat  bahwa  nila  pH cenderung  stabil  dan  normal  serta  dapat ditoleransi  oleh  ikan  patin.  Kisaran  pH optimal untuk ikan patin menurut Munisa et al. (2015), adalah 6,5-9,0.

## Tabel 2. Data Pengukuran Kualitas Air
Kualitas Air Waktu Perlakuan A B C Suhu ( o C) Pagi 28,43±0,19 a 28,42±0,16 a 28,52±0,13 a Sore 29,85±0,07 a 30,02±0,08 a 30,08±0,09 a pH Pagi 6,90±0,04 a 6,86±0,02 a 7,18±0,03 b Sore 7,13±0,04 a 7,08±0,03 a 7,21±0,04 a DO (ml/L) Pagi 0,26±0,03 a 0,29±0,02 a 0,24±0,03 a Sore 2,56±0,30 b 2,78±0,19 b 1,82±0,19 a TOM (ml/L) Pagi 314,00±27,32 a 351,66±41,11 ab 447,22±31,14 b
Keterangan : Nilai rata-rata pada baris yang sama dengan huruf superskrip berbeda menunjukan nilai yang berbeda nyata (P<0,5).

## Pengukuran Dissolved Oxygen (DO)
Dissolved Oxygen (DO)
merupakan  parameter  kualitas  yang sangat  penting  dalam  sistem  budidaya, terutama  pada  sistem  budidaya  intensif. Berdasarkan  hasil  pengukuran  DO  pada pagi hari (Tabel 2) dari kedua perlakuan dan kontrol menunjukan nilai yang tidak berbeda nyata (P>0,05), hal ini sebabkan oleh belum adanya proses fosintesis yang dilakukan  oleh  fitoplankton  sehingga cenderung  mempunyai  nilai  yang  lebih rendah.  Sedangkan  nilai  DO  pada  sore hari  dari  kedua  perlakuan  menunjukan nilai  yang  berbeda  nyata  dengan  kontrol (P<0,05).  Salah  satu  sumber  DO  berasal dari difusi oksigen yang ada di atmosfer dan aktifitas fotosintesa oleh fitoplankton (Effendi, 2003).
Kenaikan  nilai  oksigen  terlarut pada  sore  hari  ini  dari  perlakuan berhubungan  dengan  proses  fotosintesis
plankton, dimana pada perlakuan bakteri fotosintetik  tidak  memerlukan  oksigen sebagai nutrient hidupnya tetapi memerlukan komponen lain non oksigen seperti  nitrogen  dan  senyawa  organik seperti H 2 S, nitrit dan amonia (Widiyanto, 2001).
Khotimah et al. (2016), menyatakan  bahwa  DO  yang  optimal untuk budidaya ikan patin yaitu berkisar antara  2,0-7,0  ml/l,  sehingga  hasil pengukuran  oksigen  terlarut  sore  hari pada  perlakuan  masih  berada  dalam kondisi normal jika dibandingkan dengan nilai oksigen terlarut pada kolam kontrol.
Pengukuran Total Organic Matter (TOM) Kegiatan  budidaya  secara  umum akan  menyebabkan  bertambahnya  bahan organik (TOM) di dasar perairan, seiring dengan  semakin  lama  nya  waktu
budidaya.  Tingginya  TOM  di  akibatkan oleh  adanya  sisa  pakan  yang  tidak termakan oleh ikan dan sisa metabolisme seperti  feses  ikan  (Putra  dan  Gautama,
2018).
Menurut Manengkey (2010),
TOM  adalah  bahan  pencemar  pada perairan  budidaya  yang  sering  ditemui, dan akibatnya yang timbul terjadi adalah penurunan  kandungan  oksigen  terlarut diperairan  budidaya.  Menurut  Chandra (2008), kandungan bahan organik (TOM) yang  optimal  untuk  peraoran  budidaya adalah  <50  mg/l.  Kadar  bahan  organik total yang terlalu tinggi dapat berdampak buruk  bagi  organisme  yang  hidup didalamnya.
Berdasarkan  hasil  pengukuran TOM  memperlihatkan  baik  perlakuan maupun  kontrol  memiliki  nilai  TOM yang  cukup  tinggi  untuk  budidaya  ikan patin  (Tabel  2).  Namun  pada  perlakuan bakteri fotosintetik 0,2 ml/l  dan 0,5 ml/l menunjukan  nilai  yang  cenderung  lebih rendah jika dibandingkan dengan kontrol yaitu (447,22±31,14 b ). Dengan demikian dapat  dilihat  bahwa  adanya  penurunan kandungan bahan organik atau TOM pada perlakuan 0,2 ml/l dan 0,5 ml/l dibanding kontrol,  hal  ini  disebabkan  oleh  adanya proses bioremediasi yang dilakukan oleh bakteri fotosintetik.
Dalam komposisi bahan organik, senyawa  nitrogen  menjadi  dominan. Umumnya  bakteri  fotosintetik  mampu mengasimilasi karbondioksida dan molekul  nitrogen  (fiksasi  nitrogen), dengan  menggunakan  cahaya  matahari sebagai  sumber  energi  (Kobayashi, 1995).

## KESIMPULAN
Pemberian  bakteri  fotosintetik pada kolam budidaya ikan patin berpengaruh baik terhadap proses
perbaikan  kualitas  air,  yang  ditunjukan dengan  optimalnya  suhu,  pH,  DO  dan adanya  penurunan  nilai  TOM  yang disebabkan oleh adanya proses
bioremediasi yang dilakukan oleh bakteri fotosintetik.

## SARAN
Perlu  adanya  penelitian  terhadap kombinasi  bakteri  pengurai  pada  pakan dan  air  untuk  mengetahui  pengaruhnya terhadap kualitas air dan hematologi ikan patin,  dan  perlu  adanya  penelitian lanjutan  tentang  penggunaan  bakteri fotosintetik sejak awal budidaya sehingga terlihat  dampak  dari  perubahan  kualitas air terhadap ikan.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Peneliti  mengungkapkan  terima kasih kepada perusahaan CV. Tirto Bumi Agung, PT. Marindolab Pratama, Laboratorium Animal Health Service , dan PT.  Central  Proteina  Prima,  dan  semua pihak yang telah banyak membantu baik dalam  bentuk  dukungan  maupun  kritik dan  saran  yang  membangun  sehingga penelitian ini dapat terselaesaikan dengan baik.

## DAFTAR PUSTAKA
Affandi,  R.,  dan  Tang,  U.M.  2002.
Fisiologi  Hewan  Air.  Unri  Press. Riau. 166 hlm.
Chandra, E. 2008. Kajian Dampak Usaha
Budidaya Ikan Patin Jambal (Pangasius djambal) Sistem Karamba  Terhadap  Kualitas  Air Sungai Ogan Kecamatan
Pemulutan  Barat  Kabupaten  Ogan Ilir. Akuatik-Jurnal  Sumberdaya Perairan . Volume 4. No 2. hal : 22- 28.
Dopongtonung,  A.  2008.  Gambaran Darah Ikan Lele (Clarias sp. ) yang Berasal dari Daerah Laladon Bogor. Skripsi. Fakultas Kedoteran, Institut Pertanian Bogor. 36 hlm.
Effendi,  H.  2003.   Telaah  Kualitas  Air  : Bagi Pengelolaan Sumber Daya dan
Lingkungan  Perairan.  Kanisius. Yogyakarta.
Emu, S. 2010. Pemanfaatan Garam pada Pengangkutan Sistem Tertutup
Benih  Ikan  Patin (Pangasius sp. )
Berkepadatan  Tinggi  dalam  Media yang  Mengandung  Zeolit  dan
Arang  Aktif.  Tesis.  Program  Studi Ilmu Akuakultur. Sekolah Pascasarjana. IPB. Bogor. Guyton, A.C. 1997. Buku Ajar Fisiologi Kedokteran Edisi 9. Irawati
Setiawan  (Penerjemah).  Penerbit Buku kedokteran EGC, Jakarta. Hastuti,  S.    2004.    Respons  Fisiologis Ikan Gurami (Osphronemus
gouramy, Lac. ) yang  diberi  Pakan Mengandung Kromium-Ragi Terhadap Perubahan Suhu Lingkungan.    Disertasi.    Program Pascasarjana, Institut Pertaian Bogor.
Hastuti,  S.,  dan  Subandiyono.  2011. Performa  Hematologis  Ikan  Lele Dumbo (Clarias  gariepinus) dan Kualitas  Air  Media  pada  Sistim
Budidaya dengan Penerapan Kolam Biofiltrasi.  Fakultas  Perikanan  dan Ilmu Kelautan. Universitas
Diponegoro, Semarang. Jurnal Saintek  Perikanan .  Volume  6.  No 2. hal : 1-5.
Khotimah,  K.,  Harmilia,  E.D.,  dan  Sari,
R. 2016. Pemberian Probiotik pada Media  Pemeliharaan  Benih  Ikan Patin  ( Pangasius  hypophthalmus ) dalam Akuarium. Jurnal Akuakultur Rawa Indonesia . Volume 4. No 2. hal : 152-158. Kobayashi, M. 1995. Waste Remediation and  Treatment  Using  Anoxygenic Phototrophic Bacteria. In Anoxygenic Photosynthetic
Bacteria.
(pp. 1269-1282). 10.1007/0-306-47954-0_62.
Kordi,  M.G.H.  2010.  Panduan  Lengkap Memelihara  Ikan  Air  Tawar  di Kolam  Terpal.  Lily  Publisher. Yogyakarta. 279 Hal.
Lagler, K.F., Bardach, J.E., Miller, R.R.,
dan Passiono, D.R. 1977. Ichtyology.  John  Wiley  and  Sons. Inc. New York-London. Lukistyowati,  I.  2012.  Studi  Efektifitas Sambiloto ( Andrographis paniculata Nees)  untuk  Mencegah
Penyakit Edwardsiellosis pada Ikan Patin  ( Pangasius  hypopthalmus ). Berkala
Perikanan Terubuk.
Volume 40. No 2. hal : 56-74. Maftuch,  H.,  Nursyam.,  dan  Sukarni. 2012. Kajian Penggunaan Ciprofloxacin Terhadap Hematologi  Ikan  Botia (Botia macracanthus, Bleeker.) yang Diinfeksi Bakteri Aeromonas hydrophila . J. Exp Life Sci . Volume 2. No 2. hal : 65-69.
Manengkey,  Hermanto  W.K.  2010. Kandungan  Bahan  Organik  pada Sedimen  di  Perairan  Teluk  Buyat dan  Sekitarnya.  Jurnal  Perikanan dan Kelautan Tropis. Volume 6. No 3. hal 114-119.
Mansyur,  A.,  Tangko,  A.M.  2008. Probiotik  :  Pemanfaatannya  untuk Pakan  Ikan  Berkualitas  Rendah.
Media Akuakultur . Volume 3. No 2. hal  :  145-149.  http://dx.doi.org/10. 15578/ma.3.2.2008.145-149.
Munisa, Q., Subandiyono., dan
Pinandoyo. 2015. Pengaruh Kandungan Lemak dan Energi yang Berbeda  dalam  Pakan  Terhadap Pemanfaatan Pakan dan Pertumbuhan Patin (Pangasius
pangasius). Journal of Aquaculture
Management and Technology . Volume 4. No 3. hal :12-21.
Putra.,  dan  Gautama,  C.D.  2018. Dinamika Total  Organic  Matter (TOM)  pada  Air  Budidaya  Ikan Lele Sangkuriang ( Clarias Gariepinus )  di  UPT  PTPBP2KP Kepanjen, Kabupaten Malang,
Jawa  Timur.  Thesis.  Universitas Brawijaya. Suryati. 2010. Pemberian Kappakaraginan untuk Meningkatkan  Respon  Imun  Non- Spesifik  dan  Resistensi  Penyakit pada  Ikan  Lele  Dumbo (Clarias Sp. ) Skripsi.  Institut  Pertanian Bogor.
Trisna, D.E., Sasanti, A.D., dan Muslim. 2013.  Populasi  Bakteri,  Kualitas
Air  Media  Pemeliharaan  dan Histologi Benih Ikan Gabus (Channa striata) yang Diberi Pakan Berprobiotik. Jurnal  Akuakultur
Rawa  Indonesia .  Volume  1.  No  1. hal : 90-102. https: //doi.org/10.36706/jari.v1i1.1782
Vonti,  O.  2008.  Gambaran  Darah  Ikan
Mas (Cyprinus carpio Linn ) Strain Sinyonya yang Berasal dari Daerah
Ciampea  Bogor.  Skripsi.  Fakultas
Kedokteran Hewan. IPB. Bogor.
Widiyanto, T. 2001. Pendekatan Biokondisioner  dengan  Bakteri Fotosintetik  Anoksigenik  (BFA) untuk Pengendalian Senyawa Metabolik  Toksik  di  Tambak Udang. Program Pascasarjana. Institur Pertanian Bogor.
Wahjuningrum,  D.,  Ashry,  N.,  dan
Nuryati,  S.  2008.  Pemanfaatan Ekstrak Daun Ketapang Terminalia Cattapa  untuk  Pencegahan  dan Pengobatan Ikan Patin Pangasionodon hypophthalmus yang Terinfeksi Aeromonas hydrophila . Jurnal Akuakultur Indonesia .  Volume  7.  No  1.  hal  : 79–94.
Yanto,  H.,  Hastiadi.,  dan  Sunarto.  2015. Studi  Hematologi  untuk  Diagnosa Penyakit Ikan secara Dini di Sentra Produksi Budidaya Ikan Air Tawar Sungai  Kapuas  Kota  Pontianak. Jurnal  Akuatika .  Volume  4.  No  1. hal : 11-20.