## Nugroho, A. 2010. Rumput Laut. Laboratorium
Budidaya Perairan .  Fakultas  Perikanan  dan Ilmu  Kelautan.  Universitas  Diponegoro. Semarang.
Prommuak,  C.  Pasavati,  P.  Quintain,  A.T.  Goto,
M.  Shotipruk,  A.  2012.  Microalgal  Lipid Extraction  and  Evaluation  of    Single-Step Biodiesel Production. Engineering Journal. Vol 16 Issue 5.
Susanto,    E.,  2012.  Pembuatan  Biodiesel  Dari Alga Nannochloropsis sp dalam Prosiding Seminar Nasional Teknik Kimia Soebardjo
Brotohardjono Ix. Jawa Timur: Program Studi
Teknik Kimia UPN Veteran.
Winarno,  F.G.  1990. Teknologi Pengolahan Rumput Laut . Pustaka Sinar Harapan.Jakarta. Yang, F., Xiang W., Sun X., Wu H., Li T., and Long,
L . 2014.  A  Novel  Lipid  Extraction  Method from Wet Microalga Picochlorum sp. at Room Temperature. Marine drugs. 12. 1258-1270 http://www.bphmigas.go.id/konsumsi-bbm-nasional [diunduh 9 Januari 2019]. http://chemicalland21.com/index.html  [diunduh  18
Januari 2019]

## hal 457-463

## Analisis Komponen Yield Minyak Mikro Alga Hijau Dengan Medium Detmer
Bahagia 1,* Vera Viena 2
1,2 Program Studi Teknik Lingkungan Fakultas Teknik, Universitas Serambi Mekkah Jln. Unmuha Batoh Banda Aceh
* Koresponden email : bahagia@serambimekkah.ac.id
Diterima: 12 Maret 2019 Disetujui: 29 Maret 2019

## Abstract
This study examines CO2 for the growth of green microalgae by cultivating algal strains in a tank type reactor or fermentor. The study included optimization of the productivity of green algae in the capture of CO2 which can be used as a greenhouse gas catcher. Green algae were isolated from several waters in Banda Aceh and Aceh Besar. The microalgae species of this isolation and its identified species were subsequently cultivated in a tank-shaped cultivation (cultivation) container with 4 flourescent lamps (2x8 watts; 4x8 watts) installed on the outside side of the tank. This study evaluated the comparison of the growth of aerated microalgae O2 (1.25 liters / minute) with fixation of CO2 (1 and 2 liters / minute). The capture of CO2 into carbon dioxide is done by looking at the growing biomass, and the yield content of oil in biomass. The results showed that there were significant differences in the growth patterns of microalgae given O2 aeration and CO2 fixation. Modified & CHU 13 Detmer Modified media does not provide a significant difference to algal growth. With a large intensity of light with a medium that is sufficient to increase the growth of microalgae until it reaches the death phase. Component analysis by Chromatography Gas Mass Spectrometry (GC-MS) shows that the largest component in vegetable oils from green microalgae is Palmatic acid (9.36%), Thiogeraniol (24.63%), Cyclopropane Methanol (2.45%), Farnesol ( 2.39%), Trimethyl (2.78%) and Dodencadien (5.06%).
Keywords : catchment, greenhouse gases, green microalgae, isolation, cultivation, biomass

## Abstrak
Penelitian tentang CO2 untuk pertumbuhan mikroalga hijau dengan membudidayakan strain alga dalam reaktor atau fermentor tipe tangki. Kajian mencakup optimasi produktivitas alga hijau dalam penangkapan CO2 yang dapat dimanfaatkan sebagai penangkap gas rumah kaca. Alga hijau diisolasi dari beberapa perairan di Banda Aceh dan Aceh Besar. Spesies mikroalga hasil isolasi dan telah diidentifikasi jenisnya ini, selanjutnya dikultivasi dalam wadah cultivation (budidaya) berbentuk tangki yang disinari dengan 4 buah lampu flourescent (2x8 watt; 4x8 watt) terpasang disisi luar tangki. Penelitian mengevaluasi perbandingan pertumbuhan mikroalga aerasi O2 (1,25 liter/menit) dengan fiksasi CO2 (1 dan 2 liter/menit). Penangkapan CO2 menjadi karbondioksida dengan melihat biomassa yang tumbuh, dan kandungan yield minyak dalam biomassa. Hasil penelitian menunjukkan bahwa terjadi perbedaan yang nyata terhadap pola pertumbuhan mikroalga yang diberikan aerasi O2 dan fiksasi CO2. Media Detmer Modified & CHU 13 Modified tidak memberikan perbedaan yang signifikan terhadap pertumbuhan  alga.  Dengan  intensitas  cahaya  yang  besar  dengan  medium  yang  cukup  akan  meningkatkan pertumbuhan mikroalga hingga mencapai fase kematian. Analisa komponen dengan Kromatografi Gas Mass Spectrometry (GC-MS) menunjukkan komponen terbesar dalam minyak nabati dari mikroalga hijau adalah Palmatic acid (9,36 %), Thiogeraniol (24,63 %), Cyclopropane Methanol (2,45 %), Farnesol (2,39 %), Trimethyl (2,78%) dan Dodencadien (5,06 %).
Kata kunci : penangkap (fixation), gas rumah kaca (GRK), mikroalga hijau, isolasi,  kultivasi, biomassa
1. Pendahuluan Sebagian besar minyak bumi dan gas alam diyakini berasal dari alga yang hidup di lautan kuno dan yang selanjutnya mengalami deposisi dan diikuti proses transformasi kimia dibawah pengaruh geologis selama berjuta-juta tahun. Minyak bumi terdiri dari
hidrokarbon cair yang tersusun oleh atom karbon dan hidrogen. Paling tidak 80% beratnya merupakan karbon dan sisanya adalah hidrogen, dan sekitar 5% lainnya dapat terdiri dari sulfur dan oksigen. Kapasitas panas  hasil  pembakaran  minyak  bumi  relatif  tinggi dikarenakan sifat cairnya dan hampir sebanding nilai
pembakaran batubara. Berdasarkan kondisi produksi minyak  bumi  tahun  1998  sebesar  64,2  juta  barel per  hari,  diperkirakan  total  cadangan  minyak  bumi terbukti ( proven ) akan habis dalam waktu 40 tahun. Mikroalga adalah mikroorganisme fotosintetik dengan morfologi sel yang bervariasi, baik uni-selular maupun  multiselular  (membentuk  koloni  kecil). Sebagian  besar  mikroalga  tumbuh  secara  fototrofik, meskipun  tidak  sedikit  jenis  yang  mampu  tumbuh secara  heterotrofik.  Ganggang  hijau-biru  prokariotik ( cyanobacteria )  juga  termasuk  dalam  kelompok mikroalga.  Dalam  Bergey’s  Manual  of  Systematic Bacteria, kelompok mikroorganisme ini ditempatkan bersama-sama dengan kelas Oxyphotobacteria, dalam divisi Gracilicutes. Hingga saat ini tidak kurang dari 30.000  jenis  mikroalga  telah  dikenal  dan  dipelajari secara intensif (Taylor, 1967).
Di Indonesia sendiri ada ratusan jenis mikroalga (Atmadja  dkk.,  1996).  Mikroalga  merupakan tanaman  yang  paling  efisien  dalam  menangkap dan memanfaatkan energi matahari dan C0 2 untuk keperluan  fotosintesis.  Selain  itu,  C0 2 dimanfaatkan untuk meningkatkan produktivitas mikroalga (Davis, 1981). Keberadaan mikroalga sangat membantu dalam pencegahan  terjadinya  pemanasan  global.  C0 2 hasil industri yang terbuang, ditampung dan dimanfaatkan untuk  pertumbuhan  mikroalga.  Terdapat  empat kelompok mikroalga yang sejauh ini dikenal di dunia, yakni  diatom  ( Bacillariophyceae ),  ganggang  hijau ( Chlorophyceae ),  ganggang  emas  ( Chrysophyceae ), dan  ganggang  biru  ( Cyanophyceae ).  Keempat kelompok  mikroalga  tersebut  bisa  dimanfaatkan sebagai bahan baku bioenergi (Davis, 1981).
Mikroalga  merupakan  tumbuhan  paling  primitif yang umumnya hanya terdiri dari satu sel. Mikroalga merupakan  sel  yang  menggunakan  energi  matahari dalam fotosintesis untuk mengubah karbondioksida menjadi bahan bakar minyak, pangan, pakan, maupun senyawa bioaktif bernilai tinggi (Spolaore dkk., 2006).
Mikroalga  dapat  menyediakan  komponen  bahan bakar  minyak  yang  dapat  diperbaharui.  Senyawa metana  dapat  diproduksi  dari  biomassa  alga  secara pencernaan  anaerobik  (tanpa  oksigen),  hidrokarbon dan triasilgliserol dihasilkan dari mikroalga minyak (Spolaore  dkk,  2006;  Gavrilescu  dan  Chisti,  2005). Ide penggunaan mikroalga sebagai penangkapan CO 2 dan penghasil bahan bakar minyak bukan merupakan suatu hal yang baru, namun saat ini hal tersebut perlu diperhatikan  secara  sungguh-sungguh,  mengingat semakin  meningkatnya  produksi  gas  rumah  kaca yang  mengakibatkan  terjadinya  pemanasan  global (Gavrilescu dan Chisti, 2005).
Penelitian  ini  bertujuan  mengkaji  penangkapan
CO 2 untuk  pertumbuhan  mikroalga  hijau yang diperoleh  dari  beberapa  lokasi  di  Banda  Aceh  dan Aceh  Besar.  Mikroalga  tersebut  dibudidayakan dalam reaktor tipe tangki sebagai usaha penangkapan CO 2 dan kandungan minyak dalam biomassa. Kajian mencakup optimasi produktivitas alga dalam menangkap CO 2 dengan menentukan Biomassa kering mikroalga (g-BK/L) dan mengkaji kandungan minyak dari biomassa yang tumbuh.
2. Tinjauan Pustaka Mikro alga merupakan tumbuhan tak berpembuluh yang  tumbuh  melekat  pada  substrat  dasar  laut, tumbuhan tersebut tidak memiliki akar, batang, daun, bunga,  dan  biji  sejati  (Sumich,  1979).  Berdasarkan kandungan  pigmennya  rumput  laut  merupakan makroalgae bentik yang terdiri dari jenis-jenis yang termasuk divisio Rhodophyta (alga  merah), Phaeophyta (alga  coklat)  dan Chlorophyt a  (alga hijau). Rumput laut umumnya tumbuh melekat pada suatu substrat (Atmadja dkk, 1996).
Rumput  laut  atau seaweed termasuk tumbuhan berthallus  yang  banyak  dijumpai  hampir  di  seluruh perairan  pantai  Indonesia,  terutama  di  pantai  yang mempunyai rataan terumbu karang. Di dalam perairan rumput  laut  menempati  posisi  sebagai  produsen primer  yang  menyokong  kehidupan  biota  lain  pada tropik level yang lebih tinggi. Rumput laut umumnya hidup di dasar laut dan substratnya dapat berupa pasir, pecahan  karang  ( gravel ),  karang  mati,  serta  benda- benda keras yang terendam di dasar laut.
Mikro alga hidup di laut yang tidak memiliki akar, batang dan daun sejati dan pada umumnya hidup di dasar  perairan  dan  menempel  pada  substrat  (benda lain). Fungsi akar ( holdfast ) pada rumput laut bukan sebagai  penyerap  makan  melainkan  sebagai  alat pelekat  pada  substrat,  karena  tidak  memiliki  akar, batang  dan  daun  seperti  umumnya  pada  tanaman, maka rumput laut digolongkan ke  dalam tumbuhan tingkat rendah ( Thallophyta ).
Salah satu mekanisme fotosintesis yang diharapkan dapat  berperan  adalah  melalui  siklus  kehidupan mikroalga. Mulai tahun  1978  sampai  1996,  telah meneliti penggunaan algae sebagai sumber biodiesel dan  memperkirakan  subtitusi  mencapai  50%  dapat dicapai dari sumber algae tersebut ( Davis, C.C. 1981) . Mikroalga  memiliki  beberapa  karakteristik  yang atraktif, antara lain:
a.  Melalui metabolisme sel, mikroalga menghasilkan minyak  nabati  dan  sel-sel  matinya  dapat dimanfaatkan juga sebagai sumber energi melalui proses konversi kimia;
b.  Biaya  pemanenan  dan  transportasi  mikroalga
pembakaran batubara. Berdasarkan kondisi produksi minyak  bumi  tahun  1998  sebesar  64,2  juta  barel per  hari,  diperkirakan  total  cadangan  minyak  bumi terbukti ( proven ) akan habis dalam waktu 40 tahun. Mikroalga adalah mikroorganisme fotosintetik dengan morfologi sel yang bervariasi, baik uni-selular maupun  multiselular  (membentuk  koloni  kecil). Sebagian  besar  mikroalga  tumbuh  secara  fototrofik, meskipun  tidak  sedikit  jenis  yang  mampu  tumbuh secara  heterotrofik.  Ganggang  hijau-biru  prokariotik ( cyanobacteria )  juga  termasuk  dalam  kelompok mikroalga.  Dalam  Bergey’s  Manual  of  Systematic Bacteria, kelompok mikroorganisme ini ditempatkan bersama-sama dengan kelas Oxyphotobacteria, dalam divisi Gracilicutes. Hingga saat ini tidak kurang dari 30.000  jenis  mikroalga  telah  dikenal  dan  dipelajari secara intensif (Taylor, 1967).
Di Indonesia sendiri ada ratusan jenis mikroalga (Atmadja  dkk.,  1996).  Mikroalga  merupakan tanaman  yang  paling  efisien  dalam  menangkap dan memanfaatkan energi matahari dan C0 2 untuk keperluan  fotosintesis.  Selain  itu,  C0 2 dimanfaatkan untuk meningkatkan produktivitas mikroalga (Davis, 1981). Keberadaan mikroalga sangat membantu dalam pencegahan  terjadinya  pemanasan  global.  C0 2 hasil industri yang terbuang, ditampung dan dimanfaatkan untuk  pertumbuhan  mikroalga.  Terdapat  empat kelompok mikroalga yang sejauh ini dikenal di dunia, yakni  diatom  ( Bacillariophyceae ),  ganggang  hijau
( Chlorophyceae ),  ganggang  emas  ( Chrysophyceae ), dan  ganggang  biru  ( Cyanophyceae ).  Keempat kelompok  mikroalga  tersebut  bisa  dimanfaatkan sebagai bahan baku bioenergi (Davis, 1981).
Mikroalga  merupakan  tumbuhan  paling  primitif yang umumnya hanya terdiri dari satu sel. Mikroalga merupakan  sel  yang  menggunakan  energi  matahari dalam fotosintesis untuk mengubah karbondioksida menjadi bahan bakar minyak, pangan, pakan, maupun senyawa bioaktif bernilai tinggi (Spolaore dkk., 2006).
Mikroalga  dapat  menyediakan  komponen  bahan bakar  minyak  yang  dapat  diperbaharui.  Senyawa metana  dapat  diproduksi  dari  biomassa  alga  secara pencernaan  anaerobik  (tanpa  oksigen),  hidrokarbon dan triasilgliserol dihasilkan dari mikroalga minyak (Spolaore  dkk,  2006;  Gavrilescu  dan  Chisti,  2005). Ide penggunaan mikroalga sebagai penangkapan CO 2 dan penghasil bahan bakar minyak bukan merupakan suatu hal yang baru, namun saat ini hal tersebut perlu diperhatikan  secara  sungguh-sungguh,  mengingat semakin  meningkatnya  produksi  gas  rumah  kaca yang  mengakibatkan  terjadinya  pemanasan  global (Gavrilescu dan Chisti, 2005).
Penelitian  ini  bertujuan  mengkaji  penangkapan
CO 2 untuk  pertumbuhan  mikroalga  hijau yang diperoleh  dari  beberapa  lokasi  di  Banda  Aceh  dan Aceh  Besar.  Mikroalga  tersebut  dibudidayakan dalam reaktor tipe tangki sebagai usaha penangkapan CO 2 dan kandungan minyak dalam biomassa. Kajian mencakup optimasi produktivitas alga dalam menangkap CO 2 dengan menentukan Biomassa kering mikroalga (g-BK/L) dan mengkaji kandungan minyak dari biomassa yang tumbuh.

## 2. Tinjauan Pustaka
Mikro alga merupakan tumbuhan tak berpembuluh yang  tumbuh  melekat  pada  substrat  dasar  laut, tumbuhan tersebut tidak memiliki akar, batang, daun, bunga,  dan  biji  sejati  (Sumich,  1979).  Berdasarkan kandungan  pigmennya  rumput  laut  merupakan makroalgae bentik yang terdiri dari jenis-jenis yang termasuk divisio Rhodophyta (alga  merah), Phaeophyta (alga  coklat)  dan Chlorophyt a  (alga hijau). Rumput laut umumnya tumbuh melekat pada suatu substrat (Atmadja dkk, 1996).
Rumput  laut  atau seaweed termasuk tumbuhan berthallus  yang  banyak  dijumpai  hampir  di  seluruh perairan  pantai  Indonesia,  terutama  di  pantai  yang mempunyai rataan terumbu karang. Di dalam perairan rumput  laut  menempati  posisi  sebagai  produsen primer  yang  menyokong  kehidupan  biota  lain  pada tropik level yang lebih tinggi. Rumput laut umumnya hidup di dasar laut dan substratnya dapat berupa pasir, pecahan  karang  ( gravel ),  karang  mati,  serta  benda- benda keras yang terendam di dasar laut.
Mikro alga hidup di laut yang tidak memiliki akar, batang dan daun sejati dan pada umumnya hidup di dasar  perairan  dan  menempel  pada  substrat  (benda lain). Fungsi akar ( holdfast ) pada rumput laut bukan sebagai  penyerap  makan  melainkan  sebagai  alat pelekat  pada  substrat,  karena  tidak  memiliki  akar, batang  dan  daun  seperti  umumnya  pada  tanaman, maka rumput laut digolongkan ke  dalam tumbuhan tingkat rendah ( Thallophyta ). Salah satu mekanisme fotosintesis yang diharapkan dapat  berperan  adalah  melalui  siklus  kehidupan mikroalga. Mulai tahun  1978  sampai  1996,  telah meneliti penggunaan algae sebagai sumber biodiesel dan  memperkirakan  subtitusi  mencapai  50%  dapat dicapai dari sumber algae tersebut ( Davis, C.C. 1981) . Mikroalga  memiliki  beberapa  karakteristik  yang atraktif, antara lain:
a.  Melalui metabolisme sel, mikroalga menghasilkan minyak  nabati  dan  sel-sel  matinya  dapat dimanfaatkan juga sebagai sumber energi melalui proses konversi kimia;
b.  Biaya  pemanenan  dan  transportasi  mikroalga
ke  lokasi  produksi  minyak  nabati  relatif  murah dibandingkan  dengan  biomassa  lainnya  seperti kayu dan produk pertanian;
c.  Karena ukurannya relatif kecil maka mikroalga dapat dengan mudah diolah secara kimiawi;
d.  Alga dapat tumbuh dengan mudah pada kondisi- kondisi yang tidak cocok untuk tanaman pertanian biasa; dan
e.  Mikroalga  dapat  berperan  sebagai  penangkap ( fixation )  gas  rumah  kaca  atau  CO 2 di udara, sehingga berperan  juga  dalam  menurunkan  level CO 2 yang dianggap sebagai penyebab pemanasan global.
Sumber  energi  alternatif  sepanjang  garis  pantai dan bentangan perairan laut ini terkandung kekayaan sumberdaya alam yang berlimpah seperti ikan, rumput laut, bakau, terumbu karang, dan lain sebagainya. Indonesia terdiri dari 17.508 pulau, dengan garis pantai sekitar  81.000  km.  Wilayah  lautannya  meliputi  5,8 juta km 2 atau 70 persen dari total teritorial Indonesia (Dahuri dkk., 2001).
Mikroalga  dapat  berperan  sebagai  penangkap ( fixation ) gas rumah kaca atau CO 2 di udara, sehingga berperan dalam menurunkan level CO 2 yang dianggap sebagai penyebab pemanasan global. Untuk memproduksi biomassa  mikroalga  dengan  proses  fotosintesis  yang memerlukan cahaya, CO 2 , air dan garam anorganik (Nitrogen, Fosfor, Besi, Silikon), dan suhu harus dijaga sekitar 20-30 0 C.  Adanya supplai CO 2 sebagai sumber karbon  utama,  pencahayaan  dan  nutrien  dibutuhkan untuk  pertumbuhan  alga.  Sebagaimana  diketahui, banyak parameter yang menentukan produktivitas alga dalam budidayanya. CO 2 yang diberikan berlebihan dapat mematikan mikroalga.
Banerjee dkk. (2002) melaporkan bahwa pertumbuhan alga  yang  lambat  tidak  semata-mata  dampak  suplai nutrien yang terbatas, tetapi juga akibat komitmen sel- sel  untuk  menghasilkan  senyawa-senyawa  minyak. Sedangkan Rao dkk. (2007) menemukan bahwa suplai CO 2 mempengaruhi pertumbuhan sel, serta menentukan akumulasi dan komposisi asam lemak dan hidrokarbon pada  mikroalga  hijau.  Diharapkan  hasil  penelitian  ini akan memberikan kondisi optimum untuk pertumbuhan mikroalga  isolat  lokal  yang  memiliki  potensi  sebagai penangkapan CO 2 .
Mikroalga sebagai Sumber Minyak Nabati Mikroalga mengandung lemak dan asam lemak sebagai  komponen  membran,  produk  simpanan, metabolit  dan  sumber  energi.  Komposisi  kimia berbagai  mikroalga  diperlihatkan  pada  Tabel  1. Minyak  alga      memiliki  karakterisitik  mirip  dengan minyak nabati dan minyak ikan sehingga menjadi
sumber  alternatif  pengganti  produk-produk  dari minyak  fosil  (Princen,  1982).  Ekstraksi  langsung minyak mikroalga merupakan cara yang lebih efisien untuk  mendapatkan  energi  dari  mikroorganisme dibandingkan fermentasi biomassa alga menjadi metana atau methanol. Kandungan minyak dan asam lemak mikroalga bervariasi menurut kondisi budidaya.

## 3. Metode Penelitian
3.1. Bahan
Bahan yang digunakan pada penelitian ini adalah media kultur yang mengandung nutrien dan suplemen sesuai  kebutuhan  untuk  pertumbuhan  mikroalga diperlihatkan pada Tabel 2.
Komposisi mikro nutrien ditampilkan pada Tabel 3: Medium Detmer merupakan media yang tersusun dalam  satuan  per  liter  yang  kesemuanya  dilarutkan sampai  volume  air  (1000  mL)  dan  pH  media  diatur sekitar 7,5.
3.2. Alat
Wadah  tipe  tangki  (acrylic)  dilengkapi  4  lampu flourescent (masing-masing 8 watt), spektrofotometer,
Tabel 1. Komposisi kimiawi beberapa alga (% basis kering)
Sumber: Becker (1994).
Tabel 2. Komposisi medium CHU 13 modified
GC-MS  (Gas  Kromatografi  Mass  Spectrometry), mikroskop digital, autoclave, clean bench, timbangan analitik,  centrifuge,  pompa  udara,  petridish,  gelas ukur, erlenmeyer (100 ml, 250 ml, 500 ml, 1000 ml), tabung CO 2 , regulator CO 2 ,  pipet  volume,  tabung kimia,  kapas,  tissu  dan  aluminium  foil  soxklet  dan rotary evaporator.

## 3.3. Metode
Persiapan media dan culture alga hijau diperoleh dari penelitian pendahuluan sebelumnya yang berupa isolasi mikroalga dari beberapa lokasi di Banda Aceh dan Aceh Besar.  Isolat  tersebut  dapat  tumbuh  dan  berkembang dengan baik. Isolat selanjutnya dikultivasi dalam wadah cultivation (budidaya)  berbentuk  tangki  yang  disinari dengan 4 buah lampu flourescent (Philip; 2 x 8 watt, 4 x 8 watt) terpasang disisi luar tangki. Mikroalga  membutuhkan  tiga  komponen  utama untuk  pertumbuhan  yaitu  cahaya  matahari,  CO 2 , dan air  (Oilgae,  2008).  CO 2 diperoleh  secara  komersial dari  supplier  gas  yang  selanjutnya  CO 2 difiksasi untuk  proses  fotosintesis  (Moroney  dan  Somanchi, 1999).  Penelitian  ini  merupakan  riset  lanjutan  untuk perkembangbiakan mikroalga hijau ( Green algae ) lokal dengan perlakuan fiksasi CO 2 , untuk melihat efektivitas dan pertumbuhannya.
Pada riset lanjutan ini, sampel didapatkan dengan mengisolasi  mikroalga  dari  stok  sampel  penelitian terbaik  sebelumnya,  yaitu  sampel  Tanjong  Selamat.
Sampel Tanjong Selamat menghasilkan sampel culture yang  baik.  Karakteristik  lokasi  sampel  merupakan kolam  terbuka  dengan  pH  sekitar  7,7  -  8,5;  tingkat salinitas 0,01 o / oo –  0,02 o / oo .  Pengambilan  sampel dilakukan  dengan  net  plankton,  kemudian  sampel disentrifugasi dan ditanam dalam media kultur yaitu Detmer modified (DM) dan CHU 13 modified .
Tabel 3 . Komposisi mikro
Sumber : Largeau dkk., (1980)
Tabel 4 . Komposisi Medium Detmer modified
Sumber : Maeda dkk., (1998)
Gambar 1 . Grand design percobaan
Gambar 2 . Perolehan % yield minyak atau lemak mikroalga terhadap intensitas cahaya, serta laju alir CO 2 2 liter/menit, Kondisi : T = 30 o C; pH = 7,5
GC-MS  (Gas  Kromatografi  Mass  Spectrometry), mikroskop digital, autoclave, clean bench, timbangan analitik,  centrifuge,  pompa  udara,  petridish,  gelas ukur, erlenmeyer (100 ml, 250 ml, 500 ml, 1000 ml), tabung CO 2 , regulator CO 2 ,  pipet  volume,  tabung kimia,  kapas,  tissu  dan  aluminium  foil  soxklet  dan rotary evaporator.
3.3. Metode Persiapan media dan culture alga hijau diperoleh dari penelitian pendahuluan sebelumnya yang berupa isolasi mikroalga dari beberapa lokasi di Banda Aceh dan Aceh Besar.  Isolat  tersebut  dapat  tumbuh  dan  berkembang dengan baik. Isolat selanjutnya dikultivasi dalam wadah cultivation (budidaya)  berbentuk  tangki  yang  disinari dengan 4 buah lampu flourescent (Philip; 2 x 8 watt, 4 x 8 watt) terpasang disisi luar tangki.
Mikroalga  membutuhkan  tiga  komponen  utama untuk  pertumbuhan  yaitu  cahaya  matahari,  CO 2 , dan air  (Oilgae,  2008).  CO 2 diperoleh  secara  komersial dari  supplier  gas  yang  selanjutnya  CO 2 difiksasi untuk  proses  fotosintesis  (Moroney  dan  Somanchi, 1999).  Penelitian  ini  merupakan  riset  lanjutan  untuk perkembangbiakan mikroalga hijau ( Green algae ) lokal dengan perlakuan fiksasi CO 2 , untuk melihat efektivitas dan pertumbuhannya.
Pada riset lanjutan ini, sampel didapatkan dengan mengisolasi  mikroalga  dari  stok  sampel  penelitian terbaik  sebelumnya,  yaitu  sampel  Tanjong  Selamat.
Sampel Tanjong Selamat menghasilkan sampel culture yang  baik.  Karakteristik  lokasi  sampel  merupakan kolam  terbuka  dengan  pH  sekitar  7,7  -  8,5;  tingkat salinitas 0,01 o / oo –  0,02 o / oo .  Pengambilan  sampel dilakukan  dengan  net  plankton,  kemudian  sampel disentrifugasi dan ditanam dalam media kultur yaitu Detmer modified (DM) dan CHU 13 modified .
Tabel 3 . Komposisi mikro
Sumber : Largeau dkk., (1980)
Tabel 4 . Komposisi Medium Detmer modified
Sumber : Maeda dkk., (1998)
Gambar 1 . Grand design percobaan
Gambar 2 . Perolehan % yield minyak atau lemak mikroalga terhadap intensitas cahaya, serta laju alir CO 2 2 liter/menit, Kondisi : T = 30 o C; pH = 7,5

## 3.4. Prosedur Percobaan
Grand design percobaan  dengan  melakukan analisis  sampel  penangkapan  CO 2 untuk melihat biomassa  yang  tumbuh,  kandungan  minyak  ( yield minyak) dan identifikasi komponen yang terkandung dalam minyak nabati mikroalga.
4. Hasil Dan Pembahasan
4.1. Pengaruh Pencahayaan terhadap Yield Hasil penelitian seperti pada Gambar 2 diperoleh kandungan minyak atau lemak mikroalga dengan pelarut  n-heksana  pada  intensitas  cahaya  2x8  Watt diperoleh  kandungan  minyak  atau  lemak  sebesar 1,191  gr/L  dan  yield  minyak  40,05  %,  sedangkan untuk intensitas cahaya 4x8 Watt diperoleh kandungan minyak  atau  lemak  sebesar  1,773  gr/L  dan  yield minyak  79  %.  Perolehan  kandungan  minyak  algae lebih besar cahaya 4x8 Watt.
Pencahayaan  berpengaruh  nyata  dalam  perolehan minyak  atau  lemak  alga,  sehingga  pada  pencahayaan 2x8  dan  4x8  Watt  perolehan  minyak  atau  lemak  alga berbeda. Kesimpulan dari penelitian ini bahwa dengan intensitas  cahaya  lebih  besar  memberi  pengaruh terhadap perolehan minyak atau lemak alga lebih besar. Sedangkan intensitas cahaya sedang memberi pengaruh terhadap perolehan minyak atau lemak sedikit.

## 4.2. Pengaruh Media terhadap Yield
Hasil  penelitian  seperti  yang  diilustrasikan  pada Gambar  3  perolehan  kandungan  minyak  atau  lemak mikroalga dengan pelarut n-heksana pada mikroalga yang diberi media CHU modifield dan pencahayaan
4x8  watt  serta  laju  alir  CO 2 2  liter/menit  diperoleh kandungan minyak atau lemak sebesar 0,772 gr dan yield  minyak  72  %.  Sedangkan  untuk  mikroalga yang diberi media Detner modifield dan pencahayaan 4x8  watt  serta  laju  alir  CO 2 2  liter/menit  diperoleh sebesar 1,988 gr dan yield minyak 71,36 %. Perolehan kandungan minyak algae diperlihatkan pada Gambar 3.
4.3. Pengaruh  CO 2 dan O 2 terhadap Yield Hasil  penelitian  seperti  yang  diilustrasikan  pada Gambar  3  perolehan  kandungan  minyak  atau  lemak mikroalga dengan pelarut n-heksana pada mikroalga yang diberi aerasi O 2 diperoleh  kandungan  minyak atau lemak sebesar 0,81 gr dan yield minyak 50 %. Sedangkan untuk mikroalga yang diberi aerasi CO 2 diperoleh sebesar 1,902 gr dan yield minyak 74 %.
Perolehan  minyak  atau  lemak  dari  alga membuktikan alga memiliki kandungan minyak nabati yang jauh lebih besar dari tanaman lainnya. Mikroalga memiliki  kandungan  minyak  yang  komposisinya mirip  seperti  tanaman  darat,  bahkan  untuk  jenis tertentu mempunyai kandungan minyak cukup tinggi melebihi  kandungan  minyak  tanaman  darat,  seperti kelapa,  pohon  jarak  dan  sawit.  Hasil  penelitian  ini dapat disimpulan bahwa terjadi perbedaan yang nyata terhadap  perolehan  minyak  atau  lemak  diberikan aerasi O 2 dan fiksasi CO 2 berkisar 25-75%.
4.4.  Identifikasi senyawa minyak nabati menggunakan Gas Chromatography Mass Spectrometry (GC-MS)
Analisa  komponen  yield  minyak  alga  hijau  di dengan  menggunakan  Kromatografi  Gas  Mass Spectrometry (GC-MS) ditunjukkan pada Gambar 5:
Gambar 3. Perolehan % yield minyak atau lemak mikroalga terhadap media, serta laju alir CO 2 2 liter/menit, Kondisi : T = 30 o C; pH = 7,5
Gambar 4. Perolehan % yield minyak atau lemak mikroalga dengan earasi O 2 dan CO 2 dengan intensitas cahaya 4x8 Watt, Kondisi : T = 30 o C; pH = 7,5
Identifikasi  senyawa-senyawa  yang  terkandung dalam minyak nabati dari  mikroalga dilakukan dengan  menganalisa  puncak-puncak  yang  memiliki persentasi  tinggi.  Berdasarkan  Gambar  5  dapat diketahui diketahui bahwa ada 12 puncak pada analisa GC-MS  dan  6  komponen  terbesar  dalam  minyak nabati  adalah  Hexadecanoic  acid  (CAS)/Palmatic acid (9,36 %), Thiogeraniol (12,17 %),  Thiogeraniol (11,42  %),  Thiogeraniol  (24,63  %),  Thiogeraniol (22,10  %),  2,2,4-Trimethyl-3-  (3,8,12,16-  Terta Methyl-Heptadeca-3,7,11,15-Tetraenyl-yclohex (2,17 %),  2,2,4-Trimethyl-3-(3,8,12,16-  Terta  Methyl- Heptadeca-3,7,11,15-Tetraenyl-yclohex  (2,79  %), Cyclopropane  Methanol  (2,45  %),  Cis-Farnesol 2,6,10-Dedectrien-1-ol,  3,7,11-  trimethyl  (2,39 %),  2,2,4-Trimethyl-3-(3,8,12,16-  Terta  Methyl- Heptadeca-3,7,11,15-Tetraenyl-Cyclohex  (2,93%), 2,10-Dodencadien-1-ol, 3, 7, 11- trimethyl (5,06 %). Berdasarkan  data  pada  Gambar  5  dan  Tabel  5 diketahui  bahwa  ada  12  puncak  dan  6  komponen terbesar  dalam  minyak  nabati  pada  analisa  GC-MS. Puncak paling tinggi berarti kelipatan alga yang paling banyak diperoleh komponen. Berdasarkan ketinggian Retation Time (RT)  diperlukan  37,30  menit  untuk mendapatkan  komponen  2,10-Dodencadien-1-ol,  3, 7, 11- trimethyl. Senyawa dengan RT  terendah yaitu 11,63  menit  memberikan  spektrum  dengan  puncak molekul  palmitic  acid.  Spektrum  MS  dari  minyak nabati alga diperoleh sebanyak 6 (enam) jenis minyak nabati mikroalga.
Palmitic acid  ( asam palmitat ) sebagai ester gliserol yang  terdapat  dalam  minyak  nabati  mikroaga  dan lemak dengan rumus kimianya CH 3 (CH 2 ) 14 COOH.
Asam lemak adalah asam karboksilat alifatik dengan berbagai hidrokarbon panjang pada salah satu ujung rantai  bergabung  ke  terminal  karboksil  (-COOH) kelompok  di  ujung  lain.  Rumus  umum  R-(CH2) n-COOH. Asam lemak jenuh tidak memiliki ikatan yang  solid,  sedangkan  asam  oleat  merupakan  asam lemak tak jenuh memiliki satu ikatan yang kuat (juga digambarkan  sebagai  olefin)  dan  asam  lemak  tak jenuh ganda seperti asam linolenat mengandung dua atau  lebih  ikatan  padat.  Asam  laurat  (juga  disebut asam Dodecanoic) adalah asam utama dalam minyak kelapa (45 - 50 persen) dan minyak inti sawit (45 - 55  persen)  (http://chemicalland21.com).  Sedangkan komponen Triogeraniol atau 3,7-Dimethyl-2(trans),6- octadiene-1-thiol larut dalam alkohol dan air.
Kandungan  asam  lemak  ( palmatic acid )  yang ada  dalam  mikroalga  merupakan  sumber  energi. Kandungan asam lemak tersebut dihasilkan melalui proses fotosintesis yang kemudian mengubah Karbon
Gambar 5. Analisis komponen minyak nabati mikroalga dengan Kromatografi Gas Mass Spectrometry (GC-MS)
Tabel 5 . Hasil analisa GC-MS minyak nabati mikroalga
Identifikasi  senyawa-senyawa  yang  terkandung dalam minyak nabati dari  mikroalga dilakukan dengan  menganalisa  puncak-puncak  yang  memiliki persentasi  tinggi.  Berdasarkan  Gambar  5  dapat diketahui diketahui bahwa ada 12 puncak pada analisa GC-MS  dan  6  komponen  terbesar  dalam  minyak nabati  adalah  Hexadecanoic  acid  (CAS)/Palmatic acid (9,36 %), Thiogeraniol (12,17 %),  Thiogeraniol (11,42  %),  Thiogeraniol  (24,63  %),  Thiogeraniol (22,10  %),  2,2,4-Trimethyl-3-  (3,8,12,16-  Terta Methyl-Heptadeca-3,7,11,15-Tetraenyl-yclohex (2,17 %),  2,2,4-Trimethyl-3-(3,8,12,16-  Terta  Methyl- Heptadeca-3,7,11,15-Tetraenyl-yclohex  (2,79  %), Cyclopropane  Methanol  (2,45  %),  Cis-Farnesol 2,6,10-Dedectrien-1-ol,  3,7,11-  trimethyl  (2,39 %),  2,2,4-Trimethyl-3-(3,8,12,16-  Terta  Methyl- Heptadeca-3,7,11,15-Tetraenyl-Cyclohex  (2,93%),
2,10-Dodencadien-1-ol, 3, 7, 11- trimethyl (5,06 %).
Berdasarkan  data  pada  Gambar  5  dan  Tabel  5 diketahui  bahwa  ada  12  puncak  dan  6  komponen terbesar  dalam  minyak  nabati  pada  analisa  GC-MS. Puncak paling tinggi berarti kelipatan alga yang paling banyak diperoleh komponen. Berdasarkan ketinggian Retation Time (RT)  diperlukan  37,30  menit  untuk mendapatkan  komponen  2,10-Dodencadien-1-ol,  3, 7, 11- trimethyl. Senyawa dengan RT  terendah yaitu 11,63  menit  memberikan  spektrum  dengan  puncak molekul  palmitic  acid.  Spektrum  MS  dari  minyak nabati alga diperoleh sebanyak 6 (enam) jenis minyak nabati mikroalga.
Palmitic acid  ( asam palmitat ) sebagai ester gliserol yang  terdapat  dalam  minyak  nabati  mikroaga  dan lemak dengan rumus kimianya CH 3 (CH 2 ) 14 COOH.
Asam lemak adalah asam karboksilat alifatik dengan berbagai hidrokarbon panjang pada salah satu ujung rantai  bergabung  ke  terminal  karboksil  (-COOH) kelompok  di  ujung  lain.  Rumus  umum  R-(CH2) n-COOH. Asam lemak jenuh tidak memiliki ikatan yang  solid,  sedangkan  asam  oleat  merupakan  asam lemak tak jenuh memiliki satu ikatan yang kuat (juga digambarkan  sebagai  olefin)  dan  asam  lemak  tak jenuh ganda seperti asam linolenat mengandung dua atau  lebih  ikatan  padat.  Asam  laurat  (juga  disebut asam Dodecanoic) adalah asam utama dalam minyak kelapa (45 - 50 persen) dan minyak inti sawit (45 - 55  persen)  (http://chemicalland21.com).  Sedangkan komponen Triogeraniol atau 3,7-Dimethyl-2(trans),6- octadiene-1-thiol larut dalam alkohol dan air.
Kandungan  asam  lemak  ( palmatic acid )  yang ada  dalam  mikroalga  merupakan  sumber  energi. Kandungan asam lemak tersebut dihasilkan melalui proses fotosintesis yang kemudian mengubah Karbon
Gambar 5. Analisis komponen minyak nabati mikroalga dengan Kromatografi Gas Mass Spectrometry (GC-MS)
Tabel 5 . Hasil analisa GC-MS minyak nabati mikroalga
dioksida menjadi karbohidrat yang digunakan sebagai sumber makanan atau energi, dan menghasilkan hidrokarbon.  Senyawa  lain  yang  dihasilkan  dari analisa  dengan  kromatografi  gas,  kemungkinan merupakan  turunan  alkyl  ester  dari  masing- masing  asam  lemaknya.  Analisa  komponen  dengan Kromatografi Gas (GC-MS) menunjukkan komponen terbesar dalam minyak nabati dari mikroalga hijau adalah Palmatic acid (9,36 %), Thiogeraniol (24,63 %), Cyclopropane  Methanol  (2,45  %),  Farnesol  (2,39  %), dan Trimethyl (2,78%) dan Dodencadien (5,06 %).

## 5. Kesimpulan Dan Saran
5.1. Kesimpulan
Berdasarkan hasil penelitian tentang penangkapan CO 2 untuk pertumbuhan mikroalga hijau, kesimpulan yang dapat diperoleh adalah sebagai berikut : 1.  Intensitas cahaya memberikan pengaruh terhadap pertumbuhan  mikroalga  dimana  intensitas  besar akan memberikan pertumbuhan lebih cepat hingga mencapai  fase  kematian.  Sedangkan  intensitas cahaya  sedang  memberi  pengaruh  pertumbuhan alga stabil hingga mencapai fase kematian.
2.  Hasil analisis kandungan minyak diperoleh sebesar 1,372  gr/L  dengan  yield  minyak  63  % untuk medium CHU 13 modified, sedangkan medium Detmer modified diperoleh sebesar 1,903 gr/L dan yield minyak 76 %.
3.  Analisa  komponen  dengan  Kromatografi Gas Mass Spectrometry (GC-MS) menunjukkan bahan komponen  terbesar  dalam  minyak  nabati  dari mikroalga hijau adalah Palmatic acid (9,36  %), Thiogeraniol (24,63 %), Cyclopropane Methanol (2,45  %), Farnesol ( 2,39  %),  dan Trimethyl (2,78%) dan Dodencadien (5,06 %).
5.2. Saran
1.  Perlunya  pengembangan  mikroalga  yang dilakukan  lebih  besar  lagi  sehingga  dapat dilakukan peningkatan produksi minyak alga.
2.  Perlu  diteliti  lebih  lanjut  dengan  peralatan sederhana  dan  murah  yang  dapat  membuat  alga menjadi biodiesel dalam skala kecil, sehingga dapat membuka lapangan kerja bagi masyarakat.
6. Daftar Pustaka Annonymous., 2011, http://chemicalland21.com/ industrialchem.htm
Atmadja,  Kadi,  Sulistidjo  dan  Rachmaniar.  1996.
Pengenalan Jenis-Jenis Rumput Laut Indonesia . Puslitbang Oseanologi-LIPI, Jakarta.
Banerjee,  A.,  Sharma,  R.,  Chisti,  Y.  and  Banerjee, U.C., 2002, ”Botryococcus braunii: A Renewable Source of Hydrocarbons and Other Chemicals ” , Critical Reviews in Biotechnology , vol. 22, no.
3, hal. 245–279. Becker, E.W., 1994, ” Microalgae: biotechnology and microbiology ” , Cambrige Univ. Press, Cambrige, New York. Davis, C.C. 1981, “ The Marine and Freshwater Plankton”, Michigan  State  University  Press,
USA. Dahuri, H.R., J. Rais, S.P. Ginting, dan J. Sitepu. 2001.
Pengelolaan Sumberdaya  Wilayah Pesisir dan Lautan Secara Terpadu .  PT  Pradnya  Paramita. Jakarta. Gavrilescu, M., and Chisti, Y., 2005, “ Biotechnology - a sustainable alternative for chemical industry ”, Biotechnol Adv ., vol. 23, hal. 471–99. Largeau  C.,  Casadevall  E.,  Berkaloff  C.  and Dhamelincout P., 1980, “ Sites of accumulation and composition of hydrocarbons Phytochemistry” , vol. 19, hal. 1043-1051.
Maeda,S., Suhendrayatna, and Ohki, A., 1998,
“ Bioaccumulation of arsenic in D. magna fed a diet of arsenous freshwater algae ”, Proc. the 9 th Scientific Meeting (Hamamatsu) ISSN 0918- 7685, pp. 193-196.
Moroney, J. V., A. Somanchi, 1999. “ How do algae concentrate CO 2 to  increase  the  efficiensy  of photosynhetic  carbon  fixation?  Plant  Physiol ”, 119 : 9-16.
Oilgae, 2008. “ Algae Oil” ,  http://www.oilgae.com/ algae/oil, Tanggal akes 20 Februari 2008. Princen, L.H., 1982, “ Economic Botany ”, vol. 36, hlm 302-312.
Rao,  R.,  Sarada,  R.  dan  Ravishankar,  G.A.,  2007, “ Influence of CO 2 on Growth and Hydrocarbon Production in Botryococcus braunii ” , J. Microbiol. Biotechnol ., vol. 17, no. 3, hal. 414– 419.
Sumich, J.L. 1979. An Introduction to The Biology of Marine Life Fifth Edition.WCB WM. C. Brown Publisher.  United  States  of  American,  2460 Kerper Bouleverd Dubuqua IA. 52001.
Spolaore,  P.,  Joannis-Cassan,  C.,  Duran,  E.  dan Isambert,  A.,  2006,  “ Commercial applications of microalgae” , J. Biosci Bioeng , vol. 101, hal. 87–96.
Taylor, W.  R,  1967. Marine Algae Eastern Tropical and Subtropical Coast of The America Univ . Michigan Press.