## OPEN ACCESS
© 2024. Rudi Wardana, Hanum Gita Pratiwi, Jumiatun, Christa Dyah Utami

## Pengaruh Pemberian ZPT IAA Dan BAP Terhadap Pertumbuhan Ubi Jalar (Ipomoea batatas L.) Ungu Secara In Vitro
Effect of ZPT IAA and BAP Administration on Purple Sweet Potato (Ipomoea batatas L.) Adornment in Vitro
Rudi Wardana 1* , Hanum Gita Pratiwi 1 , Jumiatun 1 , Christa Dyah Utami 1
1 Jurusan Produksi Pertanian, Politeknik Negeri Jember
* rudi_wardana@polije.ac.id

## ABSTRAK
Ubi jalar (Ipomoea batatas L.) merupakan ubi yang memiliki kandungan pigmen antosianin yang tinggi. Ubi jalar ungu ini dianggap sebagai sumber antosianin yang paling baik. Dalam budidaya ubi jalar ungu dengan cara in- vitro bisa juga dilakukan secara kultur jaringan yang merupakan cara cepat untuk perbanyakan bibit ubi jalar ungu untuk  memenuhi  kebutuhan,  waktu  yang  relatif  lebih  cepat,  dapat  menghasilkan  bibit  bermutu  baik,  serta menjadikan  tumbuhan  kecil  yang  memiliki  sifat  seperti  induknya.  Tujuan  dilakukan  penelitian  ini  untuk mengetahui  konsentrasi  terbaik  dari  pemberian  ZPT  IAA  dan  BAP  terhadap  Pertumbuhan  Ubi  Jalar  Ungu. Rancangan Percobaan menggunakan RAL Faktorial dengan 2 faktor antara lain IAA (Indole-3-acetic acid) dan BAP (6-Benzyl Amino Purin), masing-masing faktor terdiri dari 9 perlakuan dan 3 ulangan. Hasil dari penambahan ZPT IAA menunjukkan waktu muncul kalus 4 HST, tekstur kalus intermediet, dan diameter kalus 8 MST berbeda nyata dengan konsentrasi optimal 0,2 mg/l.  Penambahan ZPT BAP menunjukkan diameter kalus 8 MST berbeda nyata  dengan  konsentrasi  optimal  1  mg/l.  Interaksi  pemberian  ZPT  IAA  dan  BAP  menunjukkan  hasil  berbeda tidak nyata terhadap waktu muncul kalus, tekstur kalus, dan diameter kalus.
Kata kunci — kalus, konsentrasi, ZPT.

## ABSTRACT
Sweet potato (Ipomoea batatas L.) is a potato that has a high content of anthocyanin pigments. This purple sweet potato is considered as the best source of anthocyanins. In cultivating purple sweet potato in-vitro way it can also be done in tissue culture which is a fast way to multiply purple sweet potato seeds to meet needs, relatively faster time, produce good quality seeds, and make small plants that have properties such as parent. The purpose of this study was to determine the best concentration of ZPT IAA and BAP on the growth of purple sweet potato. The experimental design used factorial RAL with 2 factors including IAA (Indole-3-acetic acid) and BAP (6-Benzyl Amino Purine), each factor consisting of 9 treatments and 3 replications. The results of the addition of ZPT IAA showed that the callus appearance time of 4 DAP, intermediate callus texture, and callus diameter 8 WAP were significantly different with the optimal concentration of 0.2 mg/l. The addition of ZPT BAP showed a significantly different callus diameter at 8 WAP with the optimal concentration of 1 mg/l. The interaction of ZPT IAA and BAP administration  showed  no  significant  difference  in  the  time  of  callus  appearance,  callus  texture,  and  callus diameter.
Keywords —   callus, concentration, ZPT.

## Pendahuluan
Ubi  jalar  ungu  (Ipomoea  batatas  L) merupakan  salah  satu  jenis  ubi  yang  menjadi sumber  antosianin,  dimana  pada  ubi  ungu terdapat  kandungan  pigmen  antosianin  yang tinggi.  Antosianin  merupakan  pigmen  warna yang  memiliki  manfaat  pada  bidang  kesehatan, pangan,  serta  industri,  dikarenakan  antosianin tidak memiliki efek bahaya [1]. Berdasarkan data Badan  Pusat  Statistik  2017  perkembangan produktivitas  ubi  jalar  di  wilayah  Jawa  Timur pada  tahun  2017  mengalami  penurunan  yaitu 257,414  ton/ha  dibanding  pada  tahun  2016  dan 2015  [2].  Adanya  penurunan  tersebut  maka diperlukan upaya peningkatan produksi ubi jalar.
Upaya peningkatan produksi harus diimbangi  dengan  ketersediaan  bibit  yang memiliki  kualitas  unggul.  Budidaya  ubi  jalar ungu  secara  in-vitro  dapat  dilakukan  melalui kultur  jaringan,  dimana  cara  tersebut  mampu memenuhi kebutuhan, karena waktu yang relatif lebih  cepat,  dan  dapat  menghasilkan  bibit bermutu  baik,  yang  memiliki  sifat  sama  seperti induknya.  Penggunaan  media  menjadi  faktor penting  dalam  keberhasilan  budidaya  secara  in vitro. Kesesuaian antara media dan eksplan harus diperhatikan karena ekplan mampu tumbuh dan berkembang  dengan  baik  dalam  membentuk kalus, tunas dan akar ketika sesuai dengan media hidupnya.  Adanya  zat  pengatur  tumbuh  pada media mampu mempengaruhi percepatan tumbuh  eksplan  [3].  Zat  pengatur  tumbuh merupakan senyawa organik bukan nutrisi yang diberikan pada tanaman dengan tujuan agar dapat mempengaruhi  proses  fisiologis  didalam  organ tanaman [4]. Penambahan ZPT jenis auksin dan sitokinin  berfungsi  sebagai  pemacu  juga menginisiasi  morfogenesis  [5].  Salah  satu  ZPT jenis auksin dan sitokinin yaitu IAA dan BAP.
IAA  (Indole-3-acetic  acid)  merupakan salah  satu  jenis  auksin  alami  yang  berperan merangsang  pertumbuhan  tanaman  dengan meningkatkan  proses  elongasi  sel,  pembelahan sel,  serta  diferensiasi  pada  tumbuhan  [6]. Penambahan  IAA  sebanyak  0,4  mg/l  dapat meningkatkan  jumlah  akar  untuk  perbanyakan tanaman iles – iles dengan cara in vitro [5]. BAP (Benzyl Amino Purin) merupakan jenis sitokinin sintetik yang mempunyai peran untuk menginduksi  tunas  [7].  Penambahan  BAP
sebanyak 1 ppm pada tunas ubi jalar berpengaruh nyata terhadap jumlah akar [8]. Sehingga dengan aplikasi  IAA  dan  BAP  diharapkan  mampu menstimulasi  pertumbuhan  dan  perkembangan ekspan dalam  membentuk  tunas.  Maka dari  itu, penelitian ini dilakukan dengan mengombinasikan  penggunaan  IAA  dan  BAP pada konsentrasi berbeda terhadap perbanyakan tanaman ubi jalar ungu secara in vitro.

## Metodologi
Penelitian ini
dilaksanakan di Laboratorium Kultur Jaringan Tanaman Politeknik Negeri Jember pada bulan September hingga Desember 2022. Adapun alat dan bahan yang  digunakan  meliputi:  Botol  kultur,  laminar air  flow  cabinet  (LAFC),  Bunsen,  petridish, timbangan  analitik,  cawan  petri,  pisau  scalpel, pinset  besar,  pinset  kecil,  gelas  ukur,  sealer, mikropipet, gelang karet, beker glass, erlenmeyer,  pH  meter,  autoklaf,  hand  sprayer, pipet  ukur,  magnetik  stirrer,  panci,  korek  api, oven,  gunting,  rak  kultur,  hot  plate,  lemari pendingin, alat tulis, kamera, eksplan dari bagian tanaman  ubi  jalar  ungu,  media  Murashage  and Skoog  (MS),  agar,  gula,  aquades,  zat  pengatur tumbuh IAA (Indole-3-acetic acid) dan BAP (6- Benzyl Amino Purin), alkohol 70%, bakterisida, fungisida, NaOH-HCl, clorox 20%, clorox 10%, tween 20, air, aluminium foil, kertas label, plastik wraping,  karet,  sarung  tangan,  tissue  steril, detergen, spiritus.

## Tabel 1. Kombinasi  Perlakuan  ZPT  IAA  dan BAP
Perlakuan BAP (mg/L) IAA (mg/L) 1 1,5 2 0,2 0,2 IAA+1 BAP 0,2 IAA+1,5 BAP 0,2 IAA+2 BAP 0,4 0,4 IAA+1 BAP 0,4 IAA+1,5 BAP 0,4 IAA+2 BAP 0,8 0,8 IAA+1 BAP 0,8 IAA+1,5 BAP 0,8 IAA+2 BAP Metode  percobaan  pada  penelitian  ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap Faktorial  (RALF)  dengan  2  faktor  perlakuan.
Faktor pertama yaitu konsentrasi ZPT IAA yang terdiri dari 3 taraf yakni 0,2 mg/l, 0,4 mg/l, dan 0,8  mg/l.  Sedangkan  faktor  kedua  yaitu konsentrasi ZPT  BAP  dengan  3  taraf perlakuan meliputi 1 mg/l, 1,5 mg/l, dan 2 mg/l. Terdapat 9 kombinasi  perlakuan  yang  diulang  sebanyak  3 kali sehingga terdapat 27 botol percobaan (Tabel 1.). Terdapat beberapa prosedur yang dilakukan meliputi pembuatan media MS0 + NAA + BAP. Pemilihan  bahan  tanam  yang  berasal  dari tanaman  unggul  dan  terbebas  dari  penyakit. Sterilisasi  bahan  tanam  dengan  menggunakan alcohol 70% kemudian clorox 20%, clorox 10% dan HgCl 2 0,1%. Lalu penanaman eksplan pada media  MS0  setelah  7  hst  dilakukan  subkultur pada media sesuai dengan perlakuan.
Variabel  yang  diamati  meliputi  waktu muncul  kalus,  kualitas  kalus,  diameter  kalus, waktu muncul tunas, jumlah tunas, tinggi tunas, jumlah daun, jumlah ruas, panjang ruas. Variabel pengamatan kedinian muncul kalus dan diameter kalus dianalisis menggunakan ANOVA (Analysis  of  variance).  Apabila  terdapat  hasil yang  berbeda  nyata  maka  dilakukan  uji  lanjut dengan  Uji  DMRT  dengan  taraf  5%  sedangkan jika  terdapat  hasil  yang  berbeda  sangat  nyata maka  menggunakan  taraf  1%.  Variabel  kualitas kalus dianalisis menggunakan Uji Chi-Square K Sampel Independent.

## Pembahasan
Berdasarkan  hasil  dari  analisis  pengaruh IAA  dan  BAP  pada  beberapa  variabel pengamatan  ubi  jalar  ungu  disajikan  pada  tabel rekapitulasi  sidik  ragam  ANOVA  sebagai berikut.
Tabel 2. Rekapitulasi sidik ragam pada variabel pengamatan Variabel Pengamatan Sumber Keragaman IAA BAP IAA + BAP Waktu Muncul Kalus ** ns ns Kualitas Kalus (Tekstur Kalus) * ns ns Diameter Kalus ** * ns
Keterangan:  ns = berbeda tidak nyata (non significant), * = berbeda nyata taraf 5% (significant),
** = berbeda sangat nyata taraf 5% (high significant), N = Faktor ZPT IAA, B = Faktor ZPT BAP

## 3.1. Waktu Muncul Kalus
Waktu  muncul  kalus  diamati  setelah penanaman  eksplan  yang  dilakukan  setiap  hari, munculnya  kalus  ditandai  dengan  adanya pembengkakan dan melengkungnya eksplan, lalu terdapat  gumpalan  berwarna  putih  kehijauan pada bagian eksplan yang terluka dan menyebar pada permukaan eksplan [10]. Berdasarkan sdik ragam  ANOVA  waktu  munculnya  kalus  pada ungu  jalar  ungu  dipengaruhi  secara  nyata  oleh ZPT  IAA.  Berikut  merupakan  hasil  uji  lanjut terhadap waktu munculnya kalus.
Tabel 3. Hasil  Uji  DMRT  1%  Penambahan ZPT IAA Terhadap Variabel Kedinian
Muncul Kalus (HST)
Notasi Rerata Nilai DMRT 1% IAA (0,8 mg/L) 6,556a - IAA (0,4 mg/L) 5,889ab 1,252 IAA (0,2 mg/L) 4,778b 1,306
Keterangan = rerata yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan hasil tersebut berbeda tidak nyata pada uji DMRT 1%.
Berdasarkan  Tabel  3  pada  beberapa konsentrasi  IAA  yang  diberikan  menunjukkan tidak adanya perbedaan yang signifikan terhadap waktu  munculnya  kalus  pada  ubi  jalar  ungu. Kedinian muncul kalus yang menunjukkan hasil yang  berbeda  tidak  nyata  dipengaruhi  oleh respons  eksplan  terhadap  konsentrasi  dan  jenis ZPT yang digunakan. ZPT yang ditambahkan ke dalam  media  eksplan  sangat  mempengaruhi keberhasilan  dalam  kultur  in  vitro.  Keefektifan ZPT pada tanaman juga dipengaruhi oleh tingkat kepekatan ZPT yang diberikan, sebab konsentrasi yang berbeda maka dapat memberikan aktivitas yang berbeda pula. Selain itu jenis zat pengatur tumbuh dapat mempengaruhi  laju  pembentukan  kalus  [12]. Kombinasi auksin rendah dengan sitokinin tinggi mampu  mempengaruhi  pembelahan  sel  dan regenerasi  tanaman  in  vitro.  Akan  tetapi konsentrasi  auksin  dan  sitokinin  yang  semakin
tinggi dapat menyebabkan terhambatnya pertumbuhan  eksplan  serta  mengakibatkan kematian pada eksplan [13].

## 3.2. Kualitas Kalus
Kualitas kalus ditentukan oleh karakteristik kalus yang dihasilkan dari eksplan. Yang  dapat  membedakan  antara  kalus  dengan tekstur  kompak,  intermediet  serta  remah  ialah dari  tekstur  dan  komposisi  selnya  [14]. Berdasarkan ANOVA kualitas kalus dipengaruhi oleh  aplikasi  IAA.  Berikut  hasil  uji  lanjut  pada tekstur kalus yang dipengaruhi oleh IAA.
Tabel 4. Uji DMRT 5% Penambahan ZPT IAA
Terhadap Variabel Tekstur Kalus Notasi Rerata Nilai DMRT 5% IAA (0,8 mg/L) 3,89a - IAA (0,4 mg/L) 3,33ab 0,66 IAA (0,2 mg/L) 3,00b 0,69
Keterangan = rerata yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan  hasil  tersebut  berbeda  tidak nyata pada uji DMRT 5%.
Berdasarkan  Tabel  4  kualitas  kalus  yang dihasilkan  pada  beberapa  konsentrasi  IAA menunjukkan  hasil  yang  berbeda  tidak  nyata pada uji DMRT 5. Rentang rerata yang tidak jauh menunjukkan bahwa pemberian IAA pada ketiga konsentrasi  tersebut  menghasilkan  tekstur  kalus intermediet serta kompak. Menurut [15] Kualitas kalus kompak dikatakan bagus untuk digunakan sebagai  bahan  penghasil  metabolit  sekunder. Tekstur  kalus  dapat  bervariasi  seperti  kompak sampai  remah  tergantung  pada  jenis  eksplan yang  dipakai,  komposisi  media,  ZPT  serta kondisi  lingkungan  tumbuh.  Tekstur  kalus berguna dalam menentukan kualitas suatu kalus, dimana mampu mengidentifikasi sel yang masih aktif  membelah  maupun  sudah  mengalami stagnasi dalam pembelahan sel [16].

## Gambar 1. Warna Kalus
Berdasarkan Gambar 1 Kualitas kalus yang dihasilkan memiliki warna hijau, sehingga kalus tersebut  tergolong  kalus  yang  memiliki  kualitas baik karena aktivitas pembelahan sel yang tinggi yang  ditandai  dengan  penyerapan  warna  yang tinggi. Penambahan auksin dan sitokinin dengan konsentrasi  yang  tepat  cenderung  menunjukkan warna  hijau  (cerah)  sehingga  kalus  lebih  tahan lama. Perubahan warna pada kalus menunjukkan telah  terjadi  perubahan  daya  regenerasi  sel  dan fase pertumbuhan sel [17].

## 3.3. Diameter Kalus
Berdasarkan  analisis  ragam  menunjukkan bahwa IAA berpengaruh sangat nyata dan BAP menunjukkan  pengaruh  yang  nyata  terhadap diameter  kalus.  Berikut  merupakan  hasil  uji lanjut konsentrasi IAA terhadap diameter kalus.
Tabel 5. Uji DMRT 1% Penambahan ZPT IAA
Terhadap Variabel Diameter Kalus Notasi Rerata Nilai DMRT 1% IAA (0,2 mg/L) 7,33a - IAA (0,4 mg/L) 6,00ab 1,45 IAA (0,8 mg/L) 5,00b 1,52
Keterangan = rerata yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan  hasil  tersebut  berbeda  tidak nyata pada uji DMRT 1%.
Berdasarkan Tabel 5 beberapa konsentrasi IAA  yang  diaplikasikan  menunjukkan  hasil diameter  kalus  yang  berbeda  tidak  nyata. Perlakuan  A1  (0,2  mg/l)  mampu  menghasilkan diameter  kalus  dengan  rerata  tertinggi  yakni 7,33.  Perbedaan  diameter  kalus  disebabkan karena  terdapat  pertambahan  volume  yang mengakibatkan  terdapat  pembesaran  sel  secara keseluruhan  sehingga  mempengaruhi  diameter kalus.  Selain  itu,  perbedaan  diameter  kalus disebabkan  eksplan  yang  dipakai  mempunyai
tingkat  kepekaan  dan  daya  serap  yang  berbeda terhadap  media  dan  ZPT  yang  digunakan. Respons  pemberian  IAA  pada  konsentrasi yang sesuai  dapat  mempercepat  terbentuknya  kalus. Menurut  [18]  IAA  merupakan  golongan  auksin yang memiliki fungsi sebagai memicu pertumbuhan sel, menginduksi kalus, mempercepat perkembangan akar, serta memacu diferensiasi jaringan vaskular.
Tabel 6. Uji DMRT 5% Penambahan ZPT BAP Terhadap Variabel Diameter Kalus Notasi Rerata Nilai DMRT 5% BAP (1 mg/L) 6,57a - BAP (1,5 mg/L) 6,10a 1,06 BAP (2 mg/L) 5,76a 1,11
Keterangan = rerata yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan  hasil  tersebut  tidak  berbeda nyata pada uji DMRT 5%.
Berdasarkan  Tabel  6  menunjukkan  bahwa pengaruh  BAP  yang  diberikan  pada  beberapa konsentrasi yang berbeda menghasilkan diameter kalus  yang  sama.  Akan  tetapi  perlakuan  B1  (1 mg/l) dapat menghasilkan diameter kalus dengan rerata  tertinggi  yakni  6,57.  Ukuran  diameter kalus  disebabkan  karena  pertambahan  volume pada kalus yang disebabkan oleh pemberian ZPT BAP. Menurut penelitian [19] dengan penambahan  ZPT  BAP  1  mg/l  merupakan konsentrasi
ZPT yang
paling tepat
mikropropagasi (perbanyakan) dibuktikan dengan  adanya  proses  morfogenesis  kalus, induksi kalus serta bisa mempengaruhi stabilnya genetik sel pada tumbuhan.
3.4. Waktu Muncul Tunas
Waktu muncul tunas ialah waktu kemunculan  tunas  yang  dibutuhkan  eksplan untuk  membentuk  tunas  pertama  kali  atau menghasilkan  tunas  baru.  Berdasarkan  pada penambahan  ZPT  IAA  dan  BAP  ulangan  2 dengan konsentrasi A2B1 (0,4 mg/l IAA + 1 mg/l BAP)  menunjukkan  bahwa  terbentuknya  tunas pada  9  minggu  setelah  tanam  (MST).  Tanaman memiliki genotipe yang berbeda sehingga setiap tanaman  akan  menghasilkan  arah  morfogenesis yang  berbeda  juga.  Menurut  [20]  menyatakan bahwa  penambahan  konsentrasi  auksin  yang
rendah  dan  sitokinin  yang  tinggi  dapat membentuk  tunas  lebih  baik.  Sehingga  dalam menginduksi  tunas  ubi  jalar  membutuhkan konsentrasi  ZPT  yang  tepat.  Selain  itu,  metode dan waktu sterilisasi mempengaruhi keberhasilan penelitian  karena  jika  tidak  sesuai  dapat menyebabkan  kerusakan  jaringan,  sehingga eksplan mengalami kematian.

## 3.5. Jumlah Tunas
Berdasarkan hasil dari kombinasi penambahan  ZPT  IAA  dan  BAP  ulangan  2 dengan konsentrasi A2B1 (0,4 mg/l IAA + 1 mg/l BAP) menunjukkan bahwa terbentuknya jumlah tunas sebanyak 4 tunas pada 11 minggu setelah tanam  (MST).  Semakin  tinggi  tanaman  maka semakin  sedikit  tunas  yang  muncul,  hal  ini dikarenakan  energi  yang  dibutuhkan  dalam membentuk  calon  tunas  difokuskan  untuk pemanjang tunas yang lain, sehingga hasil yang diperoleh jumlah tunas mengalami penghambatan. Morfogenesis jaringan dipengaruhi  oleh  keseimbangan  interaksi  ZPT yang  ditambahkan  dari  luar  (eksogen)  serta hormon  tumbuh  yang  dihasilkan  dari  sel  itu sendiri. Cepatnya pertumbuhan yang terjadi pada eksplan dipengaruhi adanya interaksi yang tepat antara hormon endogen eksplan dan penambahan hormon eksogen, yang mana proses fisiologis di dalam  eksplan  berlangsung  efektif  yang  dapat memicu tumbuhnya tunas [21].

## 3.6. Tinggi Tunas
Berdasarkan  Gambar  2  Tinggi  tunas  yang baik  dihasilkan  dari  kombinasi  ZPT  IAA  dan BAP  ulangan  2  pada  11  minggu  setelah  tanam (MST) dengan konsentrasi A2B1 (0,4 mg/l IAA +  1  mg/l  BAP)  dengan  hasil  tinggi  2,5  cm (sentimeter).  Hal  ini  dikarenakan  penambahan kombinasi  auksin  dan  sitokinin  yang  tepat mampu  menginduksi  tanaman  yang  lengkap dengan tinggi tunas yang optimal. Menurut [22] penambahan  kombinasi  ZPT  IAA  dan  BAP memberikan  pengaruh  terhadap  pertumbuhan tinggi tunas. Hormon auksin yang dikombinasikan dengan sitokinin dapat memacu pertumbuhan jaringan pembuluh serta mendorong  pembelahan  sel  pada  kambium pembuluh,  jadi  hal  ini  mendukung  dalam pertumbuhan tunas dan diameter batang.

## Gambar 2. Tinggi Tunas

## 3.7. Jumlah Daun
Berdasarkan hasil dari kombinasi ZPT IAA dan  BAP  ulangan  2  pada  11  minggu  setelah tanam  (MST)  dengan  konsentrasi  A2B1  (0,4 mg/l  IAA  +  1  mg/l  BAP)  menunjukkan  bahwa menghasilkan  jumlah  daun  sebanyak  5.  Jumlah daun  memiliki  peran  penting  bagi  tanaman terutama  dalam  proses  fotosintesis  dan  proses metabolisme  lainnya.  Semakin  banyak  jumlah daun makan semakin tinggi aktivitas fotosintetis dalam  menghasilkan  fotosintat  yang  sangat dibutuhkan  oleh  tanaman  untuk  melakukan pertumbuhan.  Semakin  banyak  tunas  yang terbentuk  maka  semakin  tinggi  pula  tingkat multiplikasi. Jika auksin dan sitokinin seimbang, maka  akan  menyebabkan  pembentukan  organ akar, batang, serta daun secara optimal [23].

## 3.8. Jumlah Ruas
Berdasarkan hasil dari kombinasi ZPT IAA dan  BAP  ulangan  2  pada  11  minggu  setelah tanam  (MST)  dengan  konsentrasi  A2B1  (0,4 mg/l  IAA  +  1  mg/l  BAP)  menunjukkan  bahwa jumlah  ruas  yang  dihasilkan  sebanyak  5  ruas. Jumlah ruas adalah salah satu indikator penting, karena ruas merupakan tempat melekatnya daun. Semakin banyak jumlah ruas, maka jumlah daun dapat  meningkat  pula.  Banyaknya  jumlah  daun mampu  mengoptimalkan  fotosintesis  sehingga pertumbuhan  tanaman  menjadi  optimal.  Hal  ini juga  sesuai  dengan  pernyataan  [24]  yang menyatakan bahwa ruas adalah tempat duduknya daun.  ZPT  auksin  dan  sitokinin  yang  sesuai sangat  mempengaruhi  pertumbuhan  tanaman, yang memacu pemanjangan ruas dengan bekerja secara berkesinambungan.
3.9. Panjang Ruas
Berdasarkan hasil dari kombinasi ZPT IAA dan  BAP  ulangan  2  pada  11  minggu  setelah tanam  (MST)  dengan  konsentrasi  A2B1  (0,4 mg/l  IAA  +  1  mg/l  BAP)  menunjukkan  bahwa panjang ruas yang dihasilkan dari pangkal batang menunjukkan  panjang  7  mm,  5  mm,  6  mm,  3 mm,  3  mm,  dan  1  mm  (milimeter).  Auksin berperan dalam memacu pertumbuhan, terutama dengan  merangsang  pemanjangan  sel  dibatang. Apabila auksin dikombinasikan dengan sitokinin akan menumbuhkan sel baru dengan pembelahan yang baik. Sehingga batang akan memanjang dan ruas  akan  semakin  bertambah.  Zat  pengatur tumbuh  eksogen  digunakan  untuk  memberikan keseimbangan  terhadap  hormon  endogen  agar dapat  mempengaruhi  respons  fisiologis  sebagai pendorong  pembelahan  serta  perpanjangan  sel [25].

## Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian  “Pengaruh Pemberian  ZPT  IAA  dan  BAP  Terhadap Pertumbuhan  Ubi  Jalar  (Ipomoea  batatas  L.) Ungu  Secara  In-Vitro”  didapatkan  kesimpulan sebagai berikut:
● Penambahan ZPT  IAA berpengaruh terhadap  waktu  muncul  kalus  4  HST, tekstur  kalus  intermediet  dan  diameter kalus  8  MST  dengan  konsentrasi  optimal 0,2 mg/l.
● Penambahan  ZPT  BAP  berpengaruh terhadap  diameter  kalus  8  MST  dengan konsentrasi  optimal  1  mg/l,  akan  tetapi tidak  berpengaruh  nyata  terhadap  waktu muncul kalus dan tekstur kalus.
● Interaksi penambahan ZPT IAA dan BAP menunjukkan  pengaruh  nyata  terhadap waktu  muncul  kalus,  tekstur  kalus,  dan diameter kalus.

## Daftar Pustaka
[1]  Priska.  M,  N.  Peni,  L.  Carvallo,  and  Y.  D.  Ngapa, “Antosianin  dan  Pemanfaatannya,” Cakra Kim. (Indonesian E-Journal Appl. Chem. , vol. 6, no. 2, pp. 79– 97, 2018.
[2]  Badan Pusat Statistik Jawa Timur, “Produksi Ubi Jalar di Jawa Timur,” 2018.
[3]  Suci.  R  dan  Y.  Mariani,  “Pengaruh  NAA  Dan  BAP Terhadap  Perkembangan  Subkultur  Gaharu  (Aquilaria Malaccensis.Lamk),” J. Hutan Lestari , vol. 1, no. 1, 2013,
[Online]. Available: http://download.portalgaruda.org/article.php?article=3276
1&val=2332&title=pengaruh  naa  dan  bap  terhadap perkembangan subkultur gaharu (aquilaria malaccensis.lamk).
[4]  Surtinah  .S,  “Potensi  Hasil  Jagung  Manis  (Zea  Mays Saccharata,  Sturt)  Dengan  Pemberian  Paket  Teknologi Pupuk Dan Zat Pengatur Tumbuh,” J. BiBieT , vol. 2, no. 1, p. 37, 2017, doi: 10.22216/jbbt.v2i1.2763.
[5]  Wardana.  R,  Jumiatun,  and  E.  Rosdiana,  “Multipikasi Tanaman  Iles  –  Iles  (  Amorphophallus  Mulleri  Blume  ) Secara  In  Vitro  Sebagai  Upaya  Peningkatan  Produksi Pangan Lokal,” J. Semin. Naional , pp. 353–357, 2017.
[6]   Redman  RS,  Kim  YO,  Woodward  CJDA,  Greer  C, Espino  L,  Doty  SL,  “Increased  fitness  of  rice  plants  to abiotic stress via habitat adapted symbiosis: a strategy for mitigating impacts of climate change,” PLoS One , vol. 6, pp. 1 – 10, 2011.
[7]  Praseptiana.  C,  S.  Darmanti,  and  E.  Prihastanti, “Multiplikasi Tunas Tebu (Saccharumo officinarum L Var. Bululawang)  dengan  Perlakuan  Konsentrasi  BAP  dan Kinetin Secara In Vitro,” Bul. Anat. dan Fisiol. , vol. 2, no. 2, p. 153, 2017, doi: 10.14710/baf.2.2.2017.153-160.
[8]  Wardana.  R,  R.  Syafa’ah,  and  J.  Jumiatun,  “Pengaruh Pemberian  ZPT  BAP  dan  GA3  terhadap  Pertumbuhan Tunas  Ubi  Jalar  (Ipomea  batatas  L.)  Varietas  Cilembu secara In Vitro,” J. Ilm. Inov. , vol. 21, no. 2, pp. 124–128, 2021, doi: 10.25047/jii.v21i2.2648.
[9]  Ziraluo, “Metode Perbanyakan Tanaman Ubi Jalar Ungu (Ipomea  batatas  Poiret)  dengan  Teknik  Kultur  Jaringan atau Stek Planlet,” J. Inov. Penelit. , vol. 2, no. 3, pp. 1037– 1046, 2021.
[10]  Puteri  .R.  F.,  E.  Ratnasari,  dan  Isnawati,  “Pengaruh Penambahan  Berbagai  Konsentrasi  NAA  (  Napthalene Acetic Acid ) dan BAP ( Benzyl Amino Purine ) terhadap Induksi Kalus Daun Sirsak ( Annona muricata ) secara In Vitro  The  Effect  of  Different  Concentration  of  NAA  ( Napthalene Acetic Acid ) and BAP,” J. LenteraBio , vol. 3, no.  3,  pp.  154–159,  2014,  [Online].  Available: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0118853.
[11]  Mashud. N, “Efek Zat Pengatur Tumbuh BAP Terhadap Pertumbuhan  Planlet  Kelapa  Genjah  Kopyor  dari Kecambah yang Dibelah,” Bul. Palma , vol. 14, no. 2, pp. 82–87, 2016.
[12]  Silalahi.  M,  “Pengaruh  Modifikasi  Media  Murashige- Skoog  (MS)  dan  Zat  Pengatur  Tumbuh  BAP  terhadap Pertumbuhan Kalus Centella asiatica L.(Urban.),” J. Pro- Life , vol. 2(1), 14–2, 2015.
[13]  Saifuddin. F, “Jesbio Vol . V No . 1 , Mei 2016 Pengaruh Indole  Acetic  Acid  (  Iaa  )  Terhadap  Hasil  Berat  Basah Akhir  Plantlet  Kultur  Jaringan  Tanaman  Jernang  ( Daemonorops Draco ( Willd .) Blume ) Dosen Universitas Almuslim-Bireuen Email :fatmawatisaifuddin@yahoo.co.id,” Jesbio ,  vol.  5, no. 1, pp. 14–17, 2016.
[14]  Sugiyarto.  L,  dan  P.  C.  Kuswadi,  “Pengaruh  2,4- Diklorofenoksiasetat  (2,4-D)  dan  Benzyl  Aminopurin (BAP)  Terhadap  Pertumbuhan  Kalus  Daun  Binahong (Anredera  cordifolia  L.)  serta  Analisis  Kandungan Flavonoid Total,” J. Pendidik. Biol. , vol. 1, no. 1, pp. 1–6,
2014.
[15]  Indah  P.  N,  dan  D.  Ermavitalini,  “Induksi  kalus  daun nyamplung  (Calophyllum  inophyllum  Linn.)  pada beberapa  kombinasi  konsentrasi  6-Benzylaminopurine (BAP)  dan  2,4-Dichlorophenpxyacetic  Acid  (2,4-D),” J.
Sains dan Seni Pomits , vol. 2, no. 1, pp. 1–6, 2013.
[16]  Ariani R. E, dan R, Anggraito YU, “Respons Pembentukan Kalus Koro Benguk (Mucuna pruriens L.) pada Berbagai Konsentrasi 2,4-D dan BAP,” J. MIPA , vol. 39(1): 20 , 2016, doi: https://doi.org/10.18343/jipi.25.1.67.
[17]  Merthaningsih,  H.  Yuswanti,  and  A.  A.  M.  Astiningsih, “Induksi  Kalus  pada  Kultur  Pollen  Phalaenopsis,” Agrotrop , vol. 8(1), p., 2018.
[18]  Widuri  .L.  I.,  P.  Dewanti,  dan  B.  Sugiharto,  “A  Simple Protocol For Somatic Embryogenesis Induction Of In Vitro Sugarcane  (  Saccharum  Officinarum.  L)  By  2,4-D  And Bap,” Biovalentia Biol. Res. J. , Vol. 2, No. 1, Pp. 1–9, 2016, Doi: 10.24233/Biov.2.1.2016.32.
[19]  Prayana.  F.  A.,  F.  Djenal,  dan  R.  Wardana, “Mikropropagasi Tangkai Daun Iles-Iles (Amorphophallus Muelleri  Blume)  Secara  In  Vitro  Dengan  Penambahan ZPT BAP Dan NAA,” Agriprima  J. Appl. Agric. Sci. , Vol.
1, No. 2, Pp. 95–104, 2017, Doi: 10.25047/Agriprima.V1i2.45.
[20]  Rodinah dan C. Nisa, “Formulasi Zat Pengatur Tumbuh Dengan Interval Waktu Subkultur Terhadap Inisiasi Dan Multiplikasi  Pisang  Talas  (Musa  Paradisiaca  Var Sapientum  L)  Secara  In  Vitro  (Growth  Regulator Formulation With Subculture Time Interval On Initiation And Multiplication O,” Vol. 43, Pp. 141–148, 2018.
[21]  Nurhanis.  S.  E.,  R.  S.  Wulandari,  dan  R.  Suryantini, “Kehutanan,  Fakultas  Tanjungpura,  Universitas  Daya, Jalan Pontianak, Nasional,” J. Hutan Lestari , Vol. 7, No. 2, Pp. 857–867, 2019.
[22]  Soelaiman.  V,  dan  A.  Ernawati,  “Pertumbuhan  Dan Perkembangan  Cabai  Keriting  (Capsicum  Annuum  L.) Secara  In  Vitro  Pada  Beberapa  Konsentrasi  BAP  Dan IAA,” Bul.  Agrohorti ,  Vol.  1,  No.  1,  P.  62,  2013,  Doi: 10.29244/Agrob.1.1.62-66.
[23]  Larekeng. S. H., “Optimasi Kombinasi Naa, Bap Dan Ga3 Pada Planlet Kentang Secara In Vitro,” J. Galung Trop. , Vol. 1, No. 1, 2012.
[24]  Aguzae .H, “Respon Pertumbuhan Bibit Stek Lada (Piper Nigrum L.) Terhadap Pemberian Air Kelapa Dan Berbagai Jenis CMA,” Agronobis , Vol. 1(1), Pp. 36–47, 2009.
[25]  Kasutjianingati.  K,  “Kemampuan  Pecah  Tunas  Dan Berbiak Mother Plant Pisang Rajabulu ( Aab ) Dan Pisang Tanduk  (  Aab  )  Dalam  Medium  Inisiasi  In  Vitro  by Kasutjianingati Kasutjianingati,” 2021.