EKSTRAKSI KUERSETIN DARI KULIT TERONG BELANDA ( Solanum betaceum Cav.) MENGGUNAKAN PELARUT ETANOL DENGAN

## METODE MASERASI DAN SOKLETASI
EXTRACTION QUERCETIN OF TAMARILLO PEELS (Solanum betaceum Cav.) USING ETHANOL WITH MACERATION AND

## SOXHLETATION
Siswarni MZ, Yusrina Ika Putri, Rizka Rinda P* Departemen Teknik Kimia, Fakultas Teknik, Universitas Sumatera Utara, Jl. Almamater Kampus USU, Medan 20155, Indonesia
* Email :rizka.rinda11@yahoo.co.id

## Abstrak
Kulit  terong  belanda  ( Solanum  betaceum Cav.)  mengandung  senyawa  flavonoid  yaitu kuersetin yang dapat berfungsi sebagai antioksidan. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kondisi  operasi  yang  terbaik  dalam  proses  ekstraksi  kuersetin  dari  kulit  terong  belanda sehingga  diperoleh  yield  yang  tinggi,  serta  dapat  menunjukkan  keberadaan  aktivitas antioksidan secara kuantitatif.  Bahan-bahan yang digunakan adalah kulit terong belanda dan etanol. Variabel berubah dalam penelitian ini adalah konsentrasi pelarut yaitu 60%, 70%, 80% dan 90% untuk maserasi dan 70%, 80%, 90%, 99% untuk sokletasi. Waktu ekstraksi yaitu 3 hari,  4  hari,  dan  5  hari  untuk  maserasi,  dan  3  jam,  4  jam,  5  jam  untuk  sokletasi.  Ekstraksi dilaksanakan  dengan  metode  maserasi  dan  sokletasi  dengan  pelarut  etanol.  Hasil  analisis kualitatif  menggunakan  FTIR  menunjukkan  keberadaan  gugus  seperti  keton,  aril  eter, hidroksil dan cincin aromatik yang menandakan keberadaan senyawa kuersetin. Hasil analisis kuantitatif  menggunakan  spektrofotometri  UV-Vis  pada  variasi  konsentrasi pelarut  99%  dan lama  ekstraksi  5  jam  untuk  sokletasi  diperoleh  yield  tertinggi  sebesar  0,0877  mg/g.  Pada variasi  konsentrasi  pelarut  80%  dan  lama  ekstraksi  5  hari  untuk  metode  maserasi  diperoleh yield tertinggi sebesar 0,0705 mg/g.
Kata kunci : kulit terong belanda, kuersetin, maserasi, sokletasi, FTIR

## Abstract
The  tamarillo  peels  (Solanum  betaceum  Cav.)  contain  flavonoid  compounds,  quercetin  that can serve as antioxidant. This research aims to determine the  best condition of operation  in tamarillo peels extraction process to obtain the high yield value, and to prove the presence of antioxidant  activity  quantitatively.  The  materials  used  this  research  are  tamarillo  peels  and ethanol.  The  independent  variables  in  this  research  were  the  concentration  of  etanol  which were 60%, 70%, 80% and 90% for maceration, and 70%, 80%, 90%, 99% for soxhletation. The  extraction  time  are  3  days,  4  days,  and  5  days  for  maceration  and  3  hours,  4  hours,  5 hours for soxhletation. Extraction is done by maceration and soxhletation.  The results of the qualitative  analysis  using  FTIR  represent  the  presence  of  functional  groups  such  as  keton, arylether,  hydroxyl  and  aromatic  rings  which  indicates  quercetin  compound’s  presence.  In quantitative  analysis  used  Spectrofotometry  UV-Vis,  with  the  variation  of  99%  solvent concentration    and  5  hours  of  extraction  time  for  soxhletation,  the  highest  yield  value obtained  0,0877  mg/g.  The  variation  of 80%  solvent  concentration  and 5 days  of  extraction time for maceration, the highest yield value obtained 0,0705 mg/g.
Keywords : tamarillo peels, quercetin, maceration, soxhletation, FTIR
Pendahuluan Terong  belanda  ( Solanum  betaceum Cav.) merupakan buah subtropis dari famili Solanacea.  Saat  ini  buah  terong  Belanda banyak  dibudidayakan  oleh  petani  di  daerah Tanah  Karo  Sumatera  Utara.  Produksi  terong belanda  dari  tahun  ke  tahun  mengalami kenaikan,  hal  itu  dapat  dilihat  dari  adanya kenaikan  produksi  buah  terong  belanda  di Indonesia dari tahun 2010 sebesar 482.305 ton, pada  tahun  2011  sebesar  519.481  ton,  dan
tahun  2013  sebesar  545.646  ton  [21].  Seiring dengan  melimpahnya  produksi  terong  belanda di  wilayah  Sumatera  Utara,  maka  limbah  kulit yang  dihasilkan  juga  meningkat.  Oleh  karena itu,  diperlukan  penanganan  terhadap  limbah kulit  terong  belanda  yangdapat  dimanfaatkan diantaranya  untuk  ekstraksi  antosianin  dari kulit  terong  belanda  [18],  uji  antioksidan  dan kuersetin dari kulit terong belanda [5]. Kuersetin digunakan untuk sejumlah aktivitas  farmakologi  seperti  obat  diabetes,
penyembuhan  luka,  dan  aktivitas  antioksidan [19].  Kuersetin  dikategorikan  sebagai flavonol yaitu  salah  satu  dari  enam  subkelas  senyawa flavonoid . Flavonol hadir  dalam  berbagai macam buah-buahan dan sayuran. Diperkirakan asupan  harian  manusia  akan flavonol dalam kisaran 20-50  mg/hari. Dari jumlah ini, sekitar 13,82 mg/hari dalam bentuk jenis kuersetin [9]. Dikarenakan  semakin  tingginya  kebutuhan masyarakat  akan  antioksidan  dan  belum didapatkannya  hasil  yang  maksimal  dalam ekstraksi kuersetin, maka diperlukan cara yang efektif  dalam  mengekstrak  kuersetin  yang terdapat dalam kulit terong Belanda.

## Teori
Kuersetin  dikategorikan  sebagai flavonol , salah  satu  dari  enam  subclass  senyawa flavonoid. The International Union of Pure and Applied  Chemistry  (IUPAC) menyebutkan nomenklatur  untuk  kuersetin  adalah 3,3',4',5,7- pentahydroxyflavanone . Kuersetin adalah aglikon. Aglikon adalah komponen bukan gula sedangkan  glikon  adalah  komponen  gula. Berbagai  flavonol  dibuat  oleh  penempatan diferensial  kelompok  fenolik-OH  dan  gula (glikon).  Semua  flavonol,  termasuk  kuersetin memiliki kesamaan yaitu 3-hydroxyflavone [9]. Rumus  struktur  dan  padatan  dari  kuersetin ditunjukkan pada gambar 1.

## Gambar 1. Struktur Kuersetin
Kuersetin  telah  banyak  diteliti  dalam beberapa  tahun  terakhir  karena  berbagai aktivitas  farmakologi,  termasuk  anti  kanker, anti alergi, antioksidan, dan anti-sifat inflamasi. Ini  telah  menunjukkan  dalam  pencegahan beberapa  kondisi  termasuk  arthritis,  alergi, borok,  komplikasi  yang  berhubungan  dengan diabetes,  katarak,  kanker,  obesitas,  penyakit kardiovaskular, dan infeksi mikroba [4]. Untuk mendapatkan  kuersetin  murni,  serangkaian langkah  yang  melibatkan  ekstraksi,  hidrolisis, dan pemurnian dilakukan. Untuk ekstraksi cair- cair  kuersetin  dari  sampel  padat  pelarut  yang digunakan  biasanya    metanol,  etanol,  atau campurannya  dengan  air  dan  /  atau  asam hidroklorik yang paling sering digunakan [24]. Kuersetin  dapat  diekstraksi  dengan  cara maserasi  [17]  ataupun  sokletasi  [19].  Maserasi berasal  dari  bahasa  latin Macerace berarti mengairi  dan  melunakan.  Dasar  dari  maserasi
adalah  melarutnya  bahan  kandungan  simplisia dari  sel  yang  rusak,  yang  terbentuk  pada  saat penghalusan, ekstraksi (difusi) bahan kandungan  dari  sel  yang  masih  utuh  [22]. Sedangkan  prinsip  kerja  metode  sokletasi adalah  sampel  ditempatkan  dalam  selulosa bidal dan ditempatkan di atas pelarut mendidih. Pelarut  kental  maka  akan  menetes  ke  dalam sampel,  pelarut  mengekstrak  bahan  dan kemudian  mengalirkan  kembali  ke  pelarut mendidih,  di  mana  siklus  ini  kemudian  akan terulang.  Setelah  beberapa  siklus  selama berjam-jam,  alat  dibongkar  dan  pelarut mengandung  ekstrak  yang  kemudian  diuapkan dan  meninggalkan  residu  untuk  analisa  lebih lanjut [25].
Pada  penelitian  ini  pelarut  yang  digunakan adalah etanol (C 2 H 5 OH), karena pada prinsipnya pelarut
harus memenuhi pharmaceutical grade . Sampai saat ini  berlaku aturan  hanya  diperbolehkan  air  dan  alkohol (etanol)  serta  campurannya.  Jenis  pelarut  lain seperti  heksana  (hidrokarbon  alifatik),  toluen (hidrokarbon  aromatik),  kloroform,  dan  aseton umumnya  digunakan  sebagai  pelarut  untuk tahap  separasi  dan  tahap  pemurnian  [7]. Adapun  kelarutan  kuersetin  dalam  pelarut etanol yaitu 2 g/L [23].

## Metodologi Penelitian
Bahan dan Peralatan Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian  ini  adalah  kulit  terong  belanda, etanol  (C 2 H 5 OH),  akuades  (H 2 O),  kuersetin standar,  heksana  (C 6 H 14 ),  dietil  eter  (C 4 H 10 O), etil  asetat  (C 4 H 8 O 2 ),  asam  sulfat  (H 2 SO 4 ), DPPH  (1,1-difenil-2-pikrilhidrazil).  Peralatan yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah beaker  glass ,  neraca  digital,  erlenmeyer,  gelas ukur,  corong  gelas,  kertas  saring,  alat  soklet berupa  labu  distilasi, extraction  chambers , refluks  kondensor,  spektrofotometer  FTIR, spektrofotometer  UV-Vis, rotary  evaporator , pipet  tetes, aluminium  foil ,batang  pengaduk, corong pemisah, ayakan 50 mesh, oven.

## Prosedur Percobaan
Tahap Ekstraksi dengan Metode Maserasi Bahan baku yang telah dihaluskan, ditimbang dan dimasukkan ke dalam erlenmeyer  kemudian  dimasukkan  pelarut etanol  (C 2 H 5 OH)  dengan  konsentrasi  60%, 70%,  80%  dan  90%  ke  dalamnya  dan  ditutup dengan  menggunakan aluminium  foil selama waktu 3 hari, 4 hari dan 5 hari.
Tahap Ekstraksi dengan Metode Sokletasi Kulit terong belanda yang telah dihancurkan,    dikeringkan    dan    dihaluskan, dibungkus  menggunakan  kertas  saring  yang kemudian  diumpankan  ke  dalam  alat  soklet. Masukkan  pelarut  etanol  dengan  variasi konsentrasi  pelarut  yaitu  70%,  80%,  90%  dan 99% kedalam labu soklet. Kemudian dipanaskan dengan suhu  ±90 o C selama dengan variasi waktu ekstraksi yaitu 3 jam, 4 jam, dan 5 jam.

## Tahap Pemurnian
Ekstrak  yang  telah  diperoleh  dipekatkan dengan menggunakan vacum rotary evaporator pada  suhu  78 o C.  Prosedur  isolasi  kuersetin ekstrak  etanol  terong  belanda  diadopsi  dari Sanghavi  dkk  [19]  yaitu  ekstrak  etanol  kulit terong belanda diekstraksi berturut-turut dengan 50 ml n-heksana (fraksi I), 50 ml dietil eter (fraksi II), dan 50 ml etil asetat (fraksi III) dengan  menggunakan  corong  pemisah.Fraksi III  dipekatkan  dan  dihidrolisis  menggunakan 7%  HCl  (10  ml/g  residu)  selama  5  jam, kemudian  disaring  dan  filtratnya  diekstraksi dengan  etil  asetat  dalam  corong  pisah  untuk mendapatkan kuersetin. Kuersetin yang diperoleh selanjutnya dianalisa dengan menggunakan spektrofotometer UV-Vis.

## Prosedur Analisis
Untuk  tahap  analisis  kuersetin  hasil penelitian,  langkah  awal  yaitu  pembuatan larutan  standar  flavonoid  kuersetin  sebagai kurva standar, yaitu membuat beberapa larutan dengan konsentrasi  yaitu 0,5; 1,0; 2,0; 4,0 dan diukur  absorbansinya  dengan  menggunakan spektrofotometer UV-Vis pada panjang gelombang 420 nm, diperoleh nilai absorbansinya  yaitu  0,018;  0,060;  0,127  dan 0,247. Hasil dari pengukuran  absorbansi inilah yang  kemudian  digunakan  untuk  membuat kurva  standar  flavonoid.  Diperoleh  persamaan garis  untuk  kurva  standar  flavonoid  yaitu  y  = 0,07246956x – 0,01613044.

## Uji Kadar Total Flavonoid
Prosedur  analisis  total  flavonoid  diadopsi dari  Chang  dkk  [6]  yaitu  sebanyak  0,5  ml larutan  ekstrak  dilarutkan  1,5  mL  etanol kemudian  ditambahkan  0,1  ml  AlCl 3 10%;  0,1 mL  kalium  asetat  1M.  Kemudian  ditambahkan akuades  sampai  tanda,  dan    didiamkan  30 menit.  Diukur  absorbansi  blangko  dan  sampel dengan  menggunakan  spektrofotometer  UV- Vis pada panjang gelombang 432 nm.

## Penentuan Yield Kuersetin
Prosedur analisis kuantitatif ditentukan oleh massa  ekstrak  diadopsi  dari  Pan  dkk  [10]. Perhitungan  yield  dilakukan  dengan  nilai absorbansi  yang  diperoleh  dikalikan  dengan nilai pengenceran dan volume kemudian dibagi dengan massa sampel. Cara perhitungan adalah sebagai berikut [10]:
Yield kuersetin (mg/g) = V W (1) Dimana: C = konsentrasi kuersetin yang diperoleh dari hasil perhitunganpersamaan regresi (mg/ml) N = nilai pengenceran V = volume ekstraksi (ml) W = kuantitas sampel (g)

## Uji Aktivitas Antioksidan
Aktivitas  antioksidan  dalam  ekstrak  kulit terong belanda dianalisa menggunakan instrumen spektrofotometer UV dengan metode DPPH  (2,2-difenil-1-pikrilhidrazil)  dari  Guo dkk [12]. Sebanyak 5 mL dari larutan uji yaitu ekstrak kulit terong belanda dicampur dengan 1 mL  dari  larutan  1  mM  DPPH  dengan  pelarut metanol.  Larutan  yang  dihasilkan  kemudian dibiarkan  selama  30  menit  sebelum  dilakukan uji dengan spektrofotometri. Dideteksi absorbansinya  pada  panjang  gelombang  517 nm.  Dihitung  persentase  berkurangnya  warna DPPH dengan menggunakan persamaan [13]:
%Inhibisi = 1 e
e x100% (2)
Dihitung  nilai  IC 50 yang  diperoleh  dari persamaan  regresi  linier  %  inhibisi  DPPH terhadap konsentrasi sampel.

## Hasil dan Pembahasan Analisis Kualitatif
Hasil  ekstrak  yang  diperoleh  pada  kulit terong belanda berwarna kuning hingga coklat. Untuk  membuktikan  keberadaan  dari  senyawa kuersetin maka dilakukan analisis ekstrak  kulit terong belanda  dengan FTIR.
Menurut  penelitian  yang  telah  dilakukan oleh  Aarti  dkk  (2012),  gugus  yang  terdapat pada senyawa kuersetin yaitu terdiri dari ikatan gugus  OH  pada  fenol  (3411  cm -1 ),  C=O  keton (1663,8  cm -1 ),  C=C  cincin  aromatis  (1608,8 cm -1 ), regangan aril C-O (1265 cm -1 ), regangan C-O-C pada keton (1167 cm -1 ) dan C-H cincin aromatis  (940,6;  821,4;  677;  602,3  cm -1 )  [1]. Data  vibrasi  hasil  analisis  ekstrak  kulit  terong belanda dapat dilihat pada tabel 1.
0,000 0,010 0,020 0,030 0,040 0,050 0,060 0,070 0,080 60 70 80 90 100 Yie ld (m g /g ) Konsentrasi Pelarut (%) 3 Hari 4 Hari 5 Hari 0 0,01 0,02 0,03 0,04 0,05 0,06 0,07 0,08 0,09 0,1 70 80 90 100 Yield (m g /g ) Konsentrasi Pelarut (%) 3 jam 4 jam 5 jam

## Tabel 1. Data Vibrasi Hasil Analisis FT-IR
Gugus Fungsinya Vibrasi FTIR (cm -1 ) Standar [11] Hasil Penelitian dengan Sokletasi Hasil Penelitian dengan Maserasi OH 3570-3200 3462,22 3413,13 C=O 1725-1700 1723,09 1712,39 Aromatik, C=C 1615-1450 1447,18 - Fenol,OH 1410-1310 1373,97 1374,55 C – O 1270–1230 1237,21 1238,89 C – O – C 1150-1050 1094,67 1092,43 Aromatik C-H 900-670 938,31; 879,35; 847,60; 787,66 879,0; 848,0; 786,82
Dari  tabel  1  dapat  dilihat  bahwa  gugus  – gugus yang seharusnya terdapat pada kuersetin telah ditemukan juga pada sampel ekstrak kulit terong  belanda.  Namun  pada  hasil  maserasi, vibrasi yang terbaca pada hasil analisis ekstrak kulit  terong  belanda  kurang  jelas  untuk menunjukkan  gugus  C=C  aromatik  yang seharusnya  terbaca  jelas  untuk  senyawa kuersetin.  Hal  ini  disebabkan  karena  proses pemurnian  yang  tidak  terjadi secara  sempurna, sehingga masih adanya zat – zat lain yang tidak dapat  dipisahkan  secara  sempurna,  yang kemudian  menutupi  kehadiran  dari  gugus cincin  aromatis  yang  ada  dalam  ekstrak  kulit terong belanda.

## Analisis Kuantitatif Pengaruh  Konsentrasi  Pelarut  Terhadap Yield Kuersetin
Konsentrasi  pelarut  merupakan  variabel yang  berhubungan  langsung  dengan  hasil ekstrak yang diperoleh selama proses ekstraksi. Beberapa  penelitian  menyatakan  penambahan air  pada  pelarut  berpengaruh  pada  hasil flavonoid  seperti  kuersetin  [15].  Pengaruh konsentrasi pelarut terhadap yield dapat dilihat pada gambar 2 dan 3.
Gambar  2.  Pengaruh  Konsentrasi  Pelarut Terhadap  Yield  Kuersetin  Pada  Metode Maserasi
Pada  gambar  2  dapat  dilihat  bahwa  yield kuersetin yang diperoleh secara umum semakin meningkat  seiring  dengan  konsentrasi  pelarut etanol  yang  semakin  besar.  Yield  kuersetin yang  diperoleh  dari  proses  ekstraksi  dengan menggunakan etanol 80% menunjukkan perbedaan  yang  besar  pada  berbagai  variasi waktu.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  sedikit perbedaan konsentrasi pelarut  yang digunakan, dapat  mempengaruhi  yield  kuersetin  yang diperoleh.

## Gambar  3.  Pengaruh  Konsentrasi  Pelarut Terhadap  Yield  Kuersetin  Pada  Metode Sokletasi
Dari  gambar  3  secara  keseluruhan  terlihat bahwa  dengan meningkatnya konsentrasi etanol  pada  pelarut  meningkatkan  yield  yang diperoleh.  Yield  terbesar  diperoleh  pada konsentrasi etanol 90% dengan perolehan yield rata-rata  sebesar  0,0618  mg/g  dan  yield terendah  dengan  perolehan  rata-rata  sebesar 0,0426 mg/g pada konsentrasi etanol 99%. Yield kuersetin meningkat dengan meningkatnya  konsentrasi  etanol.  Wang  dkk (2014)  menyatakan  bahwa  ketika  konsentrasi etanol  mencapai  maksimal,  yield  menurun, hal ini  di  interprestasikan  sebagai  kenaikan kelarutan  kuersetin  dengan  meningkatnya konsentrasi  etanol.  Namun  saat  konsentrasi etanol  lebih  tinggi  dari  maksimum,  laju ekstraksi  dari  kuersetin  menurun  secara bertahap [26].
Campuran etanol dengan air dapat meningkatkan jumlah senyawa fenolik glikosida  yang  terekstrak,  dimana  zat  ini merupakan jenis senyawa yang larut dalam air. Selain  itu,  dengan  adanya  penambahan  air  ke dalam pelarut yang digunakan dapat memperbesar jaringan pada tumbuhan (sampel) tersebut  sehingga  kontak  luas  permukaan antara  jaringan  tumbuhan  (sampel)  dengan pelarut akan semakin besar [14].
0,000 0,010 0,020 0,030 0,040 0,050 0,060 0,070 0,080 2 3 4 5 6 Yie ld (m g /g ) Waktu (Hari) 60% 70% 80% 90% 0 0,01 0,02 0,03 0,04 0,05 0,06 0,07 0,08 0,09 0,1 3 4 5 Yield (m g /g ) Waktu (jam) 70% 80%
90% 99%

## Pengaruh  Waktu  Ekstraksi  Terhadap  Yield Kuersetin
Lama  waktu  ekstraksi  merupakan  variabel yang  berhubungan  langsung  dengan  hasil ekstrak yang diperoleh selama proses ekstraksi. Pada  gambar  4  dapat  dilihat  pengaruh  waktu ekstraksi  terhadap yield  kuersetin  yang diperoleh.
Gambar  4. Pengaruh  Waktu  Ekstraksi Terhadap  Yield  Kuersetin  Pada  Metode Maserasi
Pada  gambar  4  dapat  dilihat  bahwa  yield kuersetin yang diperoleh secara umum semakin meningkat seiring dengan waktu ekstraksi yang semakin  lama.  Secara  teori  bahwa  semakin lama  proses  ekstraksi  berlangsung,  kontak antara  sampel  dan  pelarut  juga  semakin  lama sehingga
kemampuan
pelarut untuk mengekstrak senyawa dalam sampel akan lebih maksimal [3].
Gambar  5.  Pengaruh  Waktu  Ekstraksi Terhadap  Yield  Kuersetin  Pada  Metode Sokletasi
Dari  gambar  5  secara  keseluruhan  terlihat bahwa
meningkatnya waktu ekstraksi menurunkan  yield  yang  diperoleh.  Namun terjadi  kenaikan  pada  saat  telah  terjadinya penurunan.  Yield  terbesar  diperoleh  pada waktu  ekstraksi  5  jam  dengan  perolehan  yield rata-rata  sebesar  0,0635  mg/g  dan  yield
terendah  dengan  perolehan  rata-rata  sebesar 0,0321 mg/g.
Terjadi  penurunan  yield  dari  waktu ekstraksi  3  jam  menuju  4  jam.  Menurut  Chew dkk  (2011)  mengikuti  hukum  kedua  Fick  dari difusi  yang  memprediksi bahwa keseimbangan akhir  antara  konsentrasi  zat  terlarut    dalam matriks  padat  (matriks  tanaman)  dan  dalam larutan curah (pelarut) mungkin dicapai setelah waktu tertentu, yang mengarah ke perlambatan dalam hasil ekstraksi [14].

## Uji Aktivitas Antioksidan
Pengujian  aktivitas  antioksidan  ekstrak dilakukan dengan menggunakan metode DPPH.  Metode  ini  paling  umum  digunakan karena  merupakan  metode  yang  sederhana, cepat  serta  bahan  kimia  dan  sampel  yang digunakan hanya sedikit. Uji  aktivitas  antioksidan  secara  kuantitatif dinyatakan dalam IC 50 ( Inhibition
Concentration )  yaitu  besarnya  konsentrasi sampel  yang  dibutuhkan  untuk  menghambat 50%  radikal  bebas.  Daya  aktivitas  antioksidan berdasarkan  nilai  IC 50 dapat  dibagi  menjadi beberapa  kategori,  yaitu  jika  IC 50 <  50  ppm, maka  daya  antioksidan  sangat  kuat,  IC 50 50  – 100 ppm daya antioksidan kuat, IC 50 101 – 150 ppm  daya  antioksidan  sedang,  IC 50 150  –  200 ppm  daya  antioksidan  lemah  dan  IC 50 >  200 ppm  daya  antioksidan  sangat  lemah  [8]. Semakin  kecil  nilai  IC 50 suatu  senyawa  maka dapat  dikatakan  bahwa  semakin  efektif senyawa  tersebut  sebagai  antioksidan  [11]. Data  nilai  IC 50 sampel  ekstrak  kulit  terong belanda  pada  metode  maserasi  dan  sokletasi dapat dilihat pada tabel 2 dan tabel 3 berikut.
Tabel  2.  Data  Nilai  IC 50 Sampel  Ekstrak Kulit Terong Belanda Pada Metode Maserasi No Konsentrasi Pelarut (%) Waktu (Hari) Aktivitas Antioksidan IC 50 (ppm) 1 70 4 2,78 2 90 6,98
Tabel  3.  Data  Nilai  IC 50 Sampel  Ekstrak Kulit Terong Belanda Pada Metode Sokletasi No Konsentrasi Pelarut (%) Waktu (jam) Aktivitas Antioksidan IC 50 (ppm) 1 80 4 6,56 2 99 9,37
Senyawa  golongan  fenol,  seperti  flavonoid merupakan  senyawa  utama  paling  kuat  yang berperan  sebagai  antioksidan  [8].  Kemampuan antioksidan  sebagai  penangkap  radikal  bebas dikaitkan  dengan  kemampuan  antioksidan tersebut  sebagai  donor  proton.  Jumlah  proton hidrogen  yang  dapat  didonorkan  dipengaruhi jumlah  dan  posisi  gugus  hidroksil  aromatik atau hidroksil dari komponen fenolik. Semakin banyak  gugus  hidroksil  aromatik,  kemampuan penghambatan  reaksi  berantai  pada  proses oksidasi semakin efektif dengan cara mendonorkan  atom  hidrogen  atau  berperan sebagai akseptor radikal bebas [2].

## Kesimpulan
Pelarut  etanol  dapat  digunakan  untuk mengekstraksi senyawa kuersetin yang terdapat dalam  kulit  terong  belanda.  Dari  hasil  analisa FTIR terhadap hasil ektraksi terdapat kandungan gugus keton, aril eter, hidroksil dan cincin aromatis  yang menunjukkan keberadaan senyawa  kuersetin.  Yield  hasil  ekstraksi kuersetin  tertinggi  diperoleh  pada  variasi konsentrasi  pelarut  etanol  80%  dan  waktu ekstraksi  5  hari  sebesar  0,0705  mg/g  untuk maserasi  dan  diperoleh  0,0877  mg/g  pada variasi  konsentrasi  pelarut  99%  dan  lama ekstraksi 5 jam untuk sokletasi.

## Daftar Pustaka
[1]   A.  Chourasiya,  A.  Upadhayay,  R.  N. Shukla,  To  Asses  Isolation  of  Quercetin From  The  Leaves  of  Azadirachta  indica and  Antidiabetic  Study  of  The  Crude Extracts, Journal  of  Pharmaceutical  and Biomedical  Sciences ,  25(25)  2012  :  hal. 179.
[2]   A.  T.    Septiana,  A.  Asnani,  Aktivitas
Antioksidan Ekstrak Rumput Laut Sargassum  duplication , Jurnal  Teknologi
Pertanian , 14 (2) 2013 : hal. 80.
[3]   A. Yulianingtyas, B. Kusmartono, Optimasi  Volume  Pelarut  dan  Waktu Maserasi  Pengambilan  Flavonoid  Daun Belimbing  Wuluh  ( Averrhoa  bilimbi L.), Jurnal Teknik Kimia , 10(2) 2016 : hal. 58.
[4]   B.  E.  Kilfoyle,  D.  Kaushik,  J.L. Terebetski, S. Bose, and B. B. Michniak- Kohn, Formulating,  Packaging,  And Marketing Of Natural Cosmetic Products Chapter  14  :  The  Use  Of  Quercetin  And Curcumin In Skin are Consumer Products (New  Jersey:)  John  Wiley  &  Sons,  Inc., Hoboken, New Jersey,
[5]   C.  Vasco,  J.  Avila,  J.  Ruales,  U. Svanberg,  and  A.  Kamal-Eldin,  Physical
and  chemical  characteristics  of  golden- yellow  and  purple-red  varieties  of tamarillo fruit (Solanum betaceum Cav.), International  Journal  of  Food Sciences  and  Nutrition ,  60(7)  2009  :  hal 278 – 288.
[6]  C.C  Chang,  M.  Yang,  H.  Wen,  J.  Chern, Estimation  of  total  flavonoid  content  in propolis by two complementary colorimetric methods, Journal Food Drug Anal , 10(3):178–82, 2002
[7]  De   te e   Ke eh t    RI.  “P    ete St  d   U u  E  t    Tu  uh   O  t” Direktorat Jenderal Pengawasan Obat dan Makanan, 9, 2000
[8]  F.  Firdiyani,  T.  W.  Agustini,  W..  F. M ’ uf,  E  t       Se y w   B    t f Sebagai  Antioksidan  Alami Spirulina plantesis Segar  dengan  Pelarut  yang Berbeda, JPHPI , 18(1) 2015 :hal. 29.
[9]   G.  S.  Kelly,  Quercetin Alternative Medicine Review , 16(2), 2011
[10]  G.  Pan,  G.  Yu,  C.  Zhu,  J.  Qiao,
Optimization of Ultrasound-assisted Extraction (UAE) of flavonoids compounds  (FC)  from  Hawthorn  Seed (HS), Ultrasonics Sonochemistry , 19,
2012
[11]  I.  J.  Putri,  Fauziyah  dan  Elfita,  Aktivitas Antioksidan  Daun  dan  Biji  Buah  Nipah ( Nypa  fruticans )  Asal  Pesisir  Banyuasin Sumatera  Selatan  dengan  Metode  DPPH, Maspari Journal , 5(1) 2015 : hal. 17.
[12]  J. T. Guo,. et al . Antioxidant Properties of The  Extracts  From  Differents  Parts  of Broccoli  in  Taiwan, Journal  Food  Drug Analysis , 9(2) 2001 : hal 96 – 101.
[13]  J.  Coates,  Interpretation  of  Infrared Spectra, a Practical Approach, Encyclopedia  of  Analyrical  Chemistry , 2007, hal. 5 – 8.
[14]  K. K. Chew,  M.Z Khoo, S. Y. Ng, Y. Y. Thoo, Aida, W.M. Wan, Ho, C.W, Effect of  ethanol  concentration,  extraction  time and  extraction  temperature  on  the recovery  of  phenolic  compounds  and antioxidant  capacity  of  Orthosiphon stamineus  extract International  Food Research Journal , 18 (4), 2011.
[15]  Mahmiah,  Isolation  and  Identification Flavonoid  Compound  From  The  Stem Bark  of Saccopetalum  horsfieldii Benn
Indo. J. Chem. , 6(3), 2006, hal 312-315.
[16]  M. C. Tan, C. P. Tan, C. W. Ho, Effect of Extraction  Solvent  System,  Time  and Temperature on Total Phenolic Content of Henna ( Lawsonia inermis ) Stems,
International  Food  Research  Journal ,  20 (6) 2013 : hal. 3118.
[17]  M. F. Daud, E. R. Sadiyah, E.Rismawati, Pengaruh  Perbedaan  Metode  Ekstraksi Terhadap  Aktivitas  Antioksidan  Ekstrak Etanol Daun Jambu Biji (Psidium guajava L.)  Berdaging  Buah  Putih, Prosiding SNaPP  Sains,  Teknologi  dan  Kesehatan , 2(1) 2011 : hal 55 – 56.
[18]  N. H. Hurtado, et al ., Colour, pH stability and  antioxidant  activity  of  anthocyanin rutinosides  isolated  from  tamarillo  fruit
(Solanum
betaceum
Cav.), Food
Chemistry , 117, 2009, hal 88–93.
[19]  N.  Sanghavi,  R.  Srivastava,  Y.Malode, Isolation  And  Identification  Of  The Flavonoid Quercetin From Tridax Procumbens  Linn. International  Journal of Pharmaceutical Sciences and
Research , 5(4), hal 1458.
[20]  P. N. Rahardjo, Studi Banding Teknologi Pengolahan  Limbah  Cair  Pabrik  Kelapa Sawit,  Jurnal  Teknologi  Lingkungan, Volume 10 No. 1, hal : 09-18, 2009.
[21]  Rosdiana,  E.  Julianti,  L.  N.  Limbong, Pemberian Ethepon Sebagai Bahan
Perangsang  Pematangan  Pada  Buah
Terung  Belanda  Dengan  Dua  Tingkat
Kematangan, Jurnal  Rekayasa  Pangan dan Pertanian , 2(2), 2014 [22]  R.  Voight, Buku  Pelajaran  Teknologi Farmasi (Yogyakarta:  Universitas  Gajah Mada Press, 1994), hal. 577 – 578.
[23]  S. F. Nabavi, G. L. Russo, M. Daglia, S. M.  Nabavi,  Role  of  Quercetin  as  an Alternative  for  Obesity  Treatment:  You are  What  You  Eat, Food  Chemistry , 2015, hal. 7.
[24]  S. G. Dmitrienko, V. A. Kudrinskaya, dan V.  V.  Apyari,  Methods  of  Extraction, Preconcentration,  and  Determination  of
Quercetin, Journal of
Analytical
Chemistry , 67 (4), hal. 299 – 311, 2012.
[25]  S.    de    ,   h  te   2  S  tec:  It’ Principles And Applications.
Oil
Extraction  and  Analysis:  Critical  Issues and  Comparative  Studies ,  AOCS  Press, 2004.
[26]  X.H. Wang, J.T. Dai, J.P. Wang and X.H. Wu,  Enhacement Extraction of Quercetin from Suaeda  glauca Bge.  Using  Ionic
Liquid  as  Solvent, Asian  Journal  of Chemistry , 26 (4), 2014.
[27]  Y.  G.  Fanny,  Pengaruh  Pelarut  Terhadap Karakteristik  Ekstrak  Daun  Senduduk (Melastoma  malabathricum,  L) , Skripsi, Jurusan Teknologi Hasil Pertanian.
Fakultas  Teknologi  Pertanian  Universitas Andalas, Padang, 2014, hal 1.