Infeksi Anisakid pada lumba-lumba hidung botol indo-pasifik ( Tursiops aduncus ) di situs konservasi lumba-lumba, Indonesia
Ismah Atika Salmah 1, *, Risa Tiuria 2 , Agus Setiyono 3 , Tri Isyani Tungga Dewi 4
1 Program Sarjana Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor, Bogor
2 Divisi Parasitologi dan Entomologi Kesehatan, Departemen Ilmu Penyakit Hewan dan Kesmavet, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor, Bogor
3 Divisi Patologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor, Bogor
4 Rumah Sakit Hewan Pendidikan, Institut Pertanian Bogor, Bogor
ABSTRAK: Penyakit parasit dapat mempengaruhi kesehatan lumba-lumba yang dipelihara di konservasi. Informasi berkaitan dengan  jenis  parasit  yang  menginfeksi  lumba-lumba  di  konservasi  masih  sangat  terbatas.  Tujuan  penelitian  ini  adalah untuk mengidentifikasi parasit lumba-lumba hidung botol indo-pasifik ( Tursiops aduncus ) di situs konservasi lumba-lumba, Indone- sia.  Sampel  feses  diambil  secara  langsung  dari  rektum  menggunakan rubber  catheter .  Sampel  feses  dilakukan  pemeriksaan dengan metode pengapungan sederhana, filtrasi dan sedimentasi, serta metode Baermann. Hasil dari pemeriksaan sampel feses menunjukkan  satu  dari  tiga  lumba-lumba  hidung  botol  indo-pasifik  ( Tursiops  aduncus )  terinfeksi  Anisakid.  Hasil  tersebut menunjukkan perlunya dilakukan pengendalian parasit di situs konservasi lumba-lumba.
Kata kunci: anisakid, lumba-lumba, parasit
■ PENDAHULUAN
Lumba-lumba adalah  hewan  mamalia  laut  kerabat  paus dan pesut.  Terdapat  lebih  dari  40  jenis  lumba-lumba  yang telah  dikenal  di  dunia  yang  hidup  di  laut  dan  sungai (Jefferson et  al ,1993).  Secara  umum,  lumba-lumba  telah banyak  dilaporkan  sebagai  inang  definitif  untuk  parasit protozoa,  nematoda,  trematoda,  dan  acanthocephala (Quiñones et  al ,  2013).  Beberapa  parasit  yang  telah dilaporkan  pada  lumba-lumba  merupakan  parasit  zoonosis seperti Giardia spp., Cryptosporidium spp., Anisakis spp., dan Diphyllobothrium spp.    (Kleinertz et  al ,  2014). Penelitian  terkait  infeksi  parasit  lumba-lumba  telah dilakukan  pada  lumba-lumba  hidup  bebas  di  habitat alamiahnya,  terdampar,  atau  tertangkap.  Pemeriksaan parasitik umumnya dilakukan post mortem melalui nekropsi dan  imunodiagnostik  (Jaber et  al ,  2006),  sedangkan penelitian  yang  dilakukan  pada  lumba-lumba  di  konservasi masih  jarang  dilakukan.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengidentifikasi  parasit  lumba-lumba  hidung  botol  indo- pasifik ( Tursiops aduncus ) di situs konservasi lumba-lumba.
■ BAHAN DAN METODE
Sampel  feses  diambil  dari  tiga  ekor  lumba-lumba  hidung botol  ( Tursiops  aduncus )  dari  10%  populasi  di  situs konservasi lumba-lumba.
Pengambilan sampel feses. Lumba-lumba diberi kode oleh pelatih  untuk  menuju  ke  pinggir  kolam.  Bagian  rektum dibersihkan  menggunakan antiseptic  gauze  pad.  Rubber
catheter dimasukkan  ke  dalam  rektum  sedalam  5-10  cm, syringe yang  telah  berisi  NaCl  0,9%  sebanyak  20  ml dihubungkan  dengan  ujung rubber  catheter ,  piston  ditekan untuk  memasukkan  NaCl  ke  dalam  rektum. Syringe diaspirasi  dengan  cara  menarik  piston.  Sampel  feses  yang diperoleh dimasukkan ke dalam pot plastik (Gambar 1).

## Gambar 1 Pengambilan sampel feses
Feses  yang  telah  diperoleh  kemudian  diperiksa  dengan beberapa metode sebagai berikut:
a.  Pengapungan  sederhana. Sampel  feses  sebanyak  1  ml dimasukkan  ke  dalam  tabung  reaksi.  Larutan  pengapung ditambahkan  sampai  membentuk  miniskus,  kemudian ditutup menggunakan gelas penutup dan dibiarkan selama 5 menit.  Gelas  penutup  diangkat  dan  diletakkan  di  atas  gelas objek.  Pemeriksaan  feses  dilakukan  dibawah  mikroskop dengan perbesaran 200 dan 400 kali.
ISSN 2581-2416 DOI: http://dx.doi.org/10.29244/avl.2.4.67-68 http://journal.ipb.ac.id/index.php/arshivetlett
Diterima: 16-09-2018 | Direvisi: 30-10-2018 | Disetujui: 06-11-2018 © 2018 CC-BY-SA. Ini adalah artikel Open Access yang didistribusikan ber- dasarkan ketentuan dari Creative Commons Attribution ShareAlike 4.0 Inter- national License ( https://creativecommons.org/licenses/by-sa/4.0/ ).
b.  Filtrasi  dan  sedimentasi. Sampel  feses  sebanyak  4  ml ditambahkan  56  ml  aquades  pada  gelas  plastik,  kemudian disaring menggunakan saringan teh. Hasil saringan difiltrasi menggunakan  saringan  bertingkat  dengan  ukuran  celah permiabel  400,  100,  dan  45  μm.  Filtrat  yang  ada  pada saringan 45 μm ditampung pada gelas Baermann kemudian ditambahkan  aquades,  dan  diamkan  selama  30  menit. Setelah itu supernatan dibuang, sedimen dikumpulkan pada cawan petri, dan diamati  dibawah stereo mikroskop dengan perbesaran 100 dan 200 kali.
c. Metode Baermann. Sampel feses dibungkus
menggunakan kertas saring, kemudian diletakkan menggantung  dengan  posisi  terendam  dalam  gelas Baermann  yang  telah  diisi  aquades.  Feses  dibiarkan  4  jam agar  larva  turun  ke  dasar  gelas.  Larva  yang  terkumpul  di dasar  gelas  dimasukkan  ke  dalam  tabung  Eppendorf  dan disimpan di dalam refrigerator, hingga saat identifikasi.

## ■ HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil  pemeriksaan  feses  dengan  metode  pengapungan sederhana  ditemukan  satu  ekor  cacing  nematoda  dari  satu lumba-lumba.  Cacing  nematoda  yang  ditemukan  memiliki morfologi dengan bentuk gilig (Gambar 2). Bagian anterior memiliki nerve  ring terletak  dekat  dengan  ujung  anterior tubuh,  esofagus  dilengkapi  dengan  ventrikel  yang  relatif besar,  ventrikel  langsung  berhubungan  dengan  usus,  dan tidak  dilengkapi  sekum  (Gambar  2  A).  Bagian  posterior terlihat adanya mukron (Gambar 2 B). Berdasarkan ciri-ciri morfologi  tersebut  termasuk  dalam  kelompok  Anisakid. Menurut  Anderson et  al. (2009),  Anisakid  memiliki karakteristik  esofagus  dilengkapi  dengan  ventrikulus  yang membujur  sampai  silindris,  dengan  beberapa  spesies memiliki  sekum.  Ciri  morfologi  lainnya  berupa  mukron pada beberapa spesies di bagian posterior.
Gambar 2 Anisakid: A anterior, B posterior (nr = nerve ring, es = esophagus, ve = ventrikulus, us = usus, mu = mukron).
Lumba-lumba  terinfeksi  Anisakid  saat  memakan  ikan yang  terinfeksi  larva  stadium  3  (L3)  Anisakid  (Parker  dan Parker,  2002).  Lumba-lumba  hidung  botol  di  alam umumnya  memakan  berbagai  spesies  ikan, crustacea ,  dan cephalopoda . Beberapa ikan yang tersebar di perairan Indo- nesia  dilaporkan  terinfeksi  larva  Anisakid  yaitu,  ikan tongkol  lisong,  tongkol  balaki,  cakalang , kuwe,  kembung lelaki,  dan  kerapu  (Anshary et  al, 2014).  Peneliti  lainnya, Utami  (2016)  melaporkan  larva Anisakis sp.  ditemukan pada ikan selar, swagi, kembung, dan tenggiri, dengan ting-
kat  prevalensi  tertinggi  pada  ikan  selar  23,33%,  ikan lainnya  antara  3,23%-16,67%.  Lumba-lumba  di  konservasi dapat terinfeksi Anisakid dari pakan yang diberikan, seperti ikan  selar  yang  diperoleh  dari  laut  Jawa  dan  reinfeksi Anisakid dapat terjadi.
Pengendalian  Anisakid  di  konservasi  dilakukan  dengan pemberian anthelmintika secara berkala. Pengendalian akan lebih  efektif  apabila  dikombinasikan  dengan  membekukan ikan  dengan  suhu  rendah  untuk  membunuh larva  Anisakid. Pembekuan pada temperatur -20 o C  selama 168 jam efektif membunuh larva Anisakis (Baladin 2007).

## ■ SIMPULAN
Satu  dari  tiga  lumba-lumba  yang  diperiksa  di  situs konservasi lumba-lumba di Indonesia terinfeksi Anisakid.

## ■ INFORMASI PENULIS

## Penulis untuk Korespondensi
*IAS: ismahatika16@yahoo.com Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor, Bogor Jl. Agatis Kampus IPB Dramaga Bogor 16680

## ■ UCAPAN TERIMA KASIH
Situs  konservasi  lumba-lumba  atas  izin  pengambilan sampel. Staf teknisi Lab helminthologi Fakultas Kedokteran Hewan,  Institut  Pertanian  Bogor  atas  bantuan  dalam pemeriksaan sampel.

## ■ PUSTAKA ACUAN
Anderson RC, Chabaud AG, Willmott S. 2009.  Key to the Nema- tode  Parasite  of  Vertebrates.  Wallingford  Oxon  (GB):  CAB  In- ternational.
Anshary  H,  Sriwulan,  Freeman  MA,  Ogawa  K.  2014  Occurrence and  molecular  identification  of  Anisakis  Dujardin,  1845  from marine  fish  in  southern  Makassar  Strait,  Indonesia.  Korean  J Parasitol. 52(1): 9-19.
Baladin OL. Studi ketahanan hidup larva Anisakidae dengan suhu pembekuan  dan  penggaraman  pada  ikan  kembung  (Rastrelliger spp.) [Skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Jaber JR, Pérez J, Arbelo M, Zafra R, Fernández A . 2006. Patho- logical  and  immunohistochemical  study  of  gastrointestinal  le- sions  in  dolphins  stranded  in  the  Canary  Islands.  Vet  Rec. 159:410–414.
Jefferson  TA,  Leatherwood  S,  Webber  MA.  1993.  Marine  Mam- mals  of  the  World.  Rome  (RO):  United  Nations  Environment Programme  Food  and  Agriculture  Organization  of  The  United Nations.
Kleinertz  S,    Hermosilla  C,    Ziltener  A,  Kreicker  S,  Hirzmann  J, Abdel-Ghaffar  F,  Taubert  A.  2014.  Gastrointestinal  parasites  of free-living  Indo-Pacific  bottlenose  dolphins  (Tursiops  aduncus) in  the  Northern  Red  Sea,  Egypt.  Parasitol  Res.  113(4):1405-15. Parker JN, Parker PM, 2002. The Official Patient’s Sourcebook of Anisakiasis. San Diego (US): ICON Health Publication.
Quiñones R, Giovannini A, Raga JA, Fernández M. 2013. Intesti- nal  helminth  fauna  of    bottlenose  dolphin  (Tursiops  truncatus) and  common  dolphin  (Delphinus  delphis)  from  the  Western Mediterranean. J Parasitol. 99(3):576–579.
Utami P. 2014. Identifikasi Anisakis sp. pada beberapa ikan laut di beberapa tempat pelelangan ikan (TPI) Cilacap. JMST. 15(1):21- 28.