Capillaria spp. pada Ular Sanca Batik ( Python reticulatus ) di Banyuwangi Reptile Community
Capillaria spp. in a Reticulated Python (Python reticulatus) in Banyuwangi Reptile Community
Sayyida Kamila Dini 1 , Nusdianto Triakoso 2 , Amung Logam Saputro 2 ,
Aditya Yudhana 3*
1 Pendidikan Profesi Dokter Hewan, 2 Departemen Klinik Veteriner, 3 Departemen Parasitologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Universitas Airlangga, Kampus C Mulyorejo, Surabaya, Jawa Timur, Indonesia 60115.
* Corresponding author : adityayudhana@fkh.unair.ac.id

## Abstrak
Reptil sebagai hewan peliharaan eksotis semakin umum diminati oleh masyarakat, salah satunya adalah ular sanca  batik. Ular  yang dipelihara  juga rentan terinfeksi penyakit  termasuk  helminthiasis. Parasit cacing diduga dapat menginfeksi ular melalui rute per oral. Beberapa jenis makanan ular seperti tikus dan katak dapat berperan  sebagai  induk  semang  antara  dari  beberapa  jenis  cacing. Seekor  ular  sanca  batik  berjenis  kelamin jantan  yang  dipelihara  oleh  salah  satu  anggota Banyuwangi  reptile  community dipresentasikan  dengan  sifat makan  yang  normal  dan  sehat.  Laporan  kasus  ini  bertujuan  untuk  mendeteksi  cacing  pada  ular  sanca  batik tangkapan liar yang digunakan sebagai hewan peliharaan eksotis. Feses ular sanca batik dalam keadaan segar yang dimasukkan ke dalam pot sampel dan diberi alkohol 70% sebagai pengawet. Sampel kemudian diperiksa di  laboratorium  dengan  menggunakan  metode  natif,  metode  apung,  dan  sedimentasi  sederhana.  Hasil pemeriksaan di bawah mikroskop yaitu penemuan telur cacing Capillaria spp.
Kata kunci: endoparasit, Capillaria spp., Python reticulatus

## Abstract
Reptiles as exotic pets become more commonly desired by society, one of which is the reticulated python. Pythons kept as pets also have a risk of disease infection including helminthiasis. Worm parasite infects snake by the oral route. Some snake feed including frogs and mice can act as an intermediate host for worm parasites. A male reticulated python was kept by a member of the Banyuwangi reptile community and was presented with healthy  and  normal  eating  habits.  This  case  study  was  to  determine  the  worm  parasite  in  the  wild-caught reticulated  python  kept  as  an  exotic  pet.  Fresh  fecal  samples  were  stored  in  a  container  with  70%  alcohol added  as  a  preservative.  The  sample  was  then  evaluated  in  the  laboratory  and  examined  using  the  native method,  floatation  method,  and  simple  sedimentation  method.  As  result,  under  the  microscope  to  be  the Capillaria spp. the egg was observed.
Keywords: endoparasite, Capillaria spp., Python reticulatus
Received: 4 Agustus 2020 Revised: 15 Februari 2022 Accepted: 16 Maret 2022

## PENDAHULUAN
Reptil  sebagai  hewan  peliharaan  eksotis semakin  umum  diminati  oleh  masyarakat,  salah satunya  adalah  ular.  Banyak  ular  dikoleksi  dari alam liar atau merupakan biakkan dari induk yang berasal  dari  alam  liar.  Popularitas  ular  sebagai hewan  peliharaan  diperoleh  antara  lain  karena pola yang indah, gaya berjalan dan perilaku yang unik,  serta  sifat  yang  jinak  (Raś-Noryńska  dan
Sokół, 2015). Salah satu jenis ular yang populer untuk  dipelihara  adalah  ular  sanca.  Dengan bertambahnya  ular  yang  dimanfaatkan  sebagai hewan  peliharaan  maka  akan  berdampak  pula pada dokter hewan untuk menangani pasien  ular (Rossi dan Rossi, 2012).
Ular sanca batik ( Python reticulatus ) adalah spesies  ular  sanca  yang  ditemukan  di  Asia Tenggara.  Seperti  reptil  lainnya,  mereka  dapat terinfeksi oleh berbagai cacing sehingga
menghasilkan  penyakit  klinis  (Rajesh et  al ., 2015). Ular yang dipelihara juga rentan terinfeksi penyakit karena kurangnya kontrol terhadap asal dan  status  kesehatan  hewan  dapat  menyebabkan perkenalan beberapa penyakit termasuk parasitosis,  salah  satunya  adalah  infeksi  parasit internal  yaitu  cacing.  Rossi  dan  Rossi  (2012) mengatakan  parasit  cacing  diduga  banyak menginfeksi ular melalui rute per oral. Beberapa jenis makanan ular seperti  tikus dan  katak dapat berperan sebagai induk semang antara ( Intermediate  host )  dari  beberapa  jenis  cacing. Cacing yang menginfeksi saluran pencernaan ular mirip  dengan  cacing  yang  menginfeksi  saluran pencernaan anjing dan kucing, begitu pula dengan akibat  yang  ditimbulkan,  siklus  hidup,  serta bentuk telurnya.
Ular  peliharaan  tinggal  di  ruangan  yang terbatas, kondisi kandang yang tak baik, diet yang tidak  memadai  dan  secara  umum,  stress.  Faktor tersebut dapat meningkatkan risiko terinfeksinya ular  peliharaan  oleh  cacing  dengan direct  life cycle walaupun  dengan  infeksi  yang  ringan (Klingenberg,  2007).  Data  mengenai  laporan kasus infeksi parasit cacing pada ular sanca batik untuk  wilayah  Indonesia  masih  sangat  sedikit. Informasi  mengenai  parasit  yang  menginfeksi ular sanca batik dapat dijadikan data dasar sebagai bahan untuk menentukan pengambilan kebijakan perlakuan medis. Diharapkan data yang diperoleh dapat digunakan untuk melengkapi data penyakit parasit pada ular sanca batik.

## METODE
Seekor  ular  sanca  batik  berjenis  kelamin jantan  yang  dipelihara  oleh  salah  satu  anggota Banyuwangi  reptile  community dipresentasikan dengan sifat makan yang normal. Ular sanca batik ini  merupakan  hasil  tangkapan  liar  yang  berasal dari pulau Kalimantan dengan umur 2-5 tahun dan lama pemeliharaan sekitar 7 bulan.
Sampel  yang  digunakan  adalah  feses  ular sanca batik dalam keadaan segar yang dimasukkan  ke  dalam  pot  sampel  dan  diberi alkohol 70% sebagai pengawet. Sampel kemudian  diperiksa  di  Laboratorium  Instrumen Universitas  Airlangga  PSDKU  Banyuwangi
dengan  menggunakan  metode  natif,  metode apung, dan metode sedimentasi sederhana. Hasil pemeriksaan  dinyatakan  positif  bila  dalam  salah satu metode tersebut ditemukan telur cacing.
Metode natif dilakukan dengan pengambilan sedikit  feses  dengan  menggunakan  ujung  gelas pengaduk  yang  kecil  lalu  dioleskan  pada  gelas obyek. Satu dua tetes air diteteskan dan di ratakan pada  gelas  obyek  serta  ditutup  dengan cover glass . Kemudian dilakukan pemeriksaan dibawah mikroskop  dengan  pembesaran  100x  (Obyektif 10x).
Sampel  feses  kemudian  diperiksa  dengan metode  apung  dengan  cara  satu  gram  feses dimasukkan  ke  dalam  gelas  plastik  lalu ditambahkan  air  10  ml.  Feses  dan  air  diaduk sampai  rata  kemudian  disaring,  hasil  saringan dimasukkan  ke  tabung  sentrifus  selanjutnya disentrifus  selama  2-5  menit  dengan  kecepatan 1500  rpm.  Supernatant  dibuang,  sedangkan endapannya  ditambahkan  air  lagi  seperti  tahap sebelumnya kemudian disentrifus lagi selama 2-5 menit  dengan  kecepatan  1500  rpm.  Proses  ini diulang sampai supernatant jernih. Setelah jernih, supernatant  dibuang  dan  disisakan  sedikit, endapannya  diaduk  dan  diambil  sedikit  dengan pipet  Pasteur  kemudian  diletakakan  di  gelas obyek tutup dengan cover glass dan diperiksa di bawah  mikroskop  dengan  pembesaran  100x (Obyektif 10x).
Pemeriksaan sampel feses kemudin dilanjutkan  dengan  metode  sedimentasi  dengan cara  feses  sebanyak  satu  gram  dimasukkan  ke dalam  gelas  plastik  lalu  ditambahkan  air  10  ml. Feses  dan  air  diaduk  sampai  rata  kemudian disaring,  hasil  saringan  dimasukkan  ke  dalam tabung sentrifugasi selanjutnya disentrifus selama 2-5  menit  dengan  kecepatan  1500  rpm. Supernatant  dibuang,  sedangkan  endapannya ditambahkan  air  lagi  seperti  tahap  sebelumnya kemudian  disentrifus  lagi  selama  2-5  menit dengan  kecepatan  1500  rpm.  Proses  ini  diulang sampai  supernatant  jernih.  Setelah  jernih, supernatant  dibuang  dan  disisakan  sedikit, tambahkan  larutan  gula  jenuh  sampai  1  cm  dari mulut  tabung,  lalu  disentrifugasi  dengan  cara yang sama. Setelah disentrifus, tabung sentrifugasi  diletakkan  di  rak  tabung  dan  pelan-
pelan  ditetesi  dengan  larutan  gula  jenuh  sampai cairan  terlihat  cembung  pada  mulut  tabung sentrifugasi  lalu  letakkan  cover  glass  pada permukaan tabung sentrifugasi selama 1-2 menit. Cover glass diangkat dan diletakkan di atas gelas obyek dan diperiksa di bawah mikroskop dengan pembesaran 100x (Obyektif 10x) (Sosiawati dkk., 2017).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Ular sanca batik merupakan ular terpanjang dengan  rekor  mencapai  10  meter  dan  tidak berbisa,  tapi  memiliki  kemampuan  untuk melilitkan diri pada mangsa. Ular sanca batik ini merupakan  predator,  ular  ini  memiliki  lubang yang dapat mendeteksi kehangatan diantara bibir dan  moncongnya  untuk  memburu  mangsa berdarah  hangat.  Motif  tubuh  ular  ini  mudah dikenali dengan pola berwarna oranye, hitam, dan putih  yang  berbentuk  seperti  jaring,  beberapa spesimen  memiliki  kepala  berwarna  kuning terang.  Kepala  ular  lebih  panjang  daripada  ular sanca lainnya, iris dari mata ular berwarna oranye dengan pupil vertikal berbentuk elips. Sanca batik memiliki  daerah  penyebaran  yang  sangat  luas meliputi  Asia  tenggara,  serta  banyak  pulau  di Filipina dan Indonesia (O'Shea, 2018).
Gambar 1. Telur Capillaria  spp .  pada  ular sanca batik (pembesaran 400x).
Sampel feses menunjukkan keberadaan telur cacing Capillaria  spp. (Gambar  1)  dengan
karakteristik  tutup  pada  kedua  ujung  telur  atau disebut  juga  bipolar  plugs  (Divers  dan  Mader, 2005).  Temuan  telur Capillaria  spp .  Sesuai dengan  penemuan  Wolf et  al. (2014)  pada  ular sanca  bola  ( Python  regius )  dan  sanca  hijau ( Morelia  viridis )  dengan  deskripsi  yang  serupa dan  temuan  Pantchev  dan  Tappe  (2011)  yaitu Capillaria  hepatica dan Ophidiocapillaria  spp. pada ular sanca bola.
Capillaria spp. merupakan salah satu parasit cacing  yang  umum  ditemukan  pada  ular, penelitian yang telah dilakukan sebelumnya oleh Akhila et  al. (2018)  menunjukkan  prevalensi Capillaria  spp. sebesar  22.8%  pada  ular  yang ditangkar
di kebun
binatang Thiruvananthapuram, Kerala, India. Penelitian di Kerala,  India  mengenai  endoparasit  pada  ular tangkaran yang berasal dari alam liar menunjukkan prevalensi Capillariasis sebesar 72 % dari sebanyak 25 ekor ular (Radhakrishnan et al .,  2009).  Rataj et  al. (2011)  melaporkan  telur Strongylid,  Ascaridae, Capillaria  spp .  dan Pentastomida  ( Porocephalus  crotali )  pada  sanca bola. Capillaria  hepatica dapat  ditemukan  di dalam  feses  ular  yang  memakan  rodensia terinfeksi,  adapun Capillaria  spp. merupakan parasit  dengan  host  spesifik  ular  atau  dapat disebut  juga Ophidiocapillaria  spp. (Pantchev dan Tappe 2011).
Siklus hidup dari Capillaria hepatica adalah secara  langsung  dengan  predileksi  organ  hepar. Setelah  ingesti  telur  yang  telah  terembrionasi, larva  menetas  di  area  sekum  dan  menuju  hepar melewati sistem vena porta. Cacing dewasa hidup di inang mamalia dimana cacing betina bertelur di dalam parenkim hepar setelah kawin. Masa hidup cacing dewasa termasuk pendek (18-60 hari post infeksi  pada  tikus)  (Juncker-Voss et  al .,  2000; Schmidt, 2001). Telur yang belum terembrionasi akan  terlepas  ke  lingkungan  Ketika  host  mati (pembusukan host; ekskresi pada feses karnivora atau kanibalisme). Tergantung kondisi lingkungan,  telur  akan  terembrionasi  dalam  5-8 minggu. Studi laboratorium menunjukkan bahwa telur  terembrionasi  masih  memiliki  kemampuan untuk  menginfeksi  dalam  waktu  25  bulan (Juncker-Voss et  al .,  2000).  Siklus  hidup Capillaria  hepatica akan  menutup  apabila  host
mamalia mengingesti telur yang telah terembrionasi. Ingesti telur yang belum terembrionasi  akan  mengakibatkan  infeksi  semu (pseudoparasitosis).  Infeksi  semu  terjadi  ketika telur  yang  belum  terembrionasi  teringesti  oleh inang  telur  kemudian  melewati  usus  dan dilepaskan  bersama  feses.  Infeksi  semu  hanya menyebabkan gejala yang ringan (Fuehrer et al., 2011). Capillaria  spp. dengan  host  spesifik  ular memiliki  siklus  hidup  secara  tidak  langsung (dapat  juga  secara  langsung)  dan  diperoleh melalui  ingesti  inang  perantara.  Ular  dapat tertular  setelah  diberi  pakan  cacing  tanah.  Ular hasil  tangkapan  liar  dapat  terinfeksi  setelah mengkonsumsi  inang  perantara  yang  tidak diketahui (Klingenberg, 2007).
Capillaria spp . menduduki saluran pencernaan ular tetapi mungkin untuk bermigrasi ke  organ  lain,  kebanyakan  kasus  infeksi Capillaria  spp. bersifat  subklinis  tetapi  penyakit dapat  terjadi  apabila  terjadi  infeksi  organ  hepar dan  saluran  empedu  (Divers  dan  Mader,  2005). Infeksi Capillaria  spp. yang  berat  dapat mengurangi  fungsi  hepar  pada  ular  yang terinfeksi (Klingenberg, 2007).
Sebuah studi kasus yang melaporkan ular sanca  batik  dengan  gejala  regurgitasi  makanan, lemas,  dan  inaktif  selama  3  bulan.  Pemeriksaan feses menunjukkan adanya telur cacing Ophidoascaris spp ., Kalicephalus spp .,  dan Capillaria spp .  Ular  sanca  batik  kemudian diberikan pengobatan antelmintik pyrantel pamoate dengan dosis 25 mg/kg berat badan  per oral.  Pengobatan  kemudian  diulangi  setelah  dua minggu.  Sampel  feses  ular  sanca  batik  diperiksa tingga  minggu  berturut-turut  setelah  pengobatan menunjukkan penurunan telur per gram tinja yang signifikan  dan  peningkatan  nafsu  makan, pergerakan,  dan  berat  badan  tanpa  regurgitasi makanan (Ingole et al ., 2015).

## KESIMPULAN
Laporan  kasus ini berhasil mengidentifikasi telur cacing Capillaria spp. pada ular sanca batik.
Diperlukan penelitian lebih lanjut untuk memperjelas  sifat  biologis  dari  cacing  guna menegakkan  penanganan  medis.  Edukasi  terkait
penyakit parasit pada hewan reptil perlu diberikan kepada pemilik ular sanca batik.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Peneliti  mengucapkan  terimakasih  kepada Universitas  Airlangga  PSDKU  Banyuwangi  dan Banyuwangi  Reptile  Community atas  izin  dan fasilitas  yang  telah  diberikan  kepada  peneliti untuk melaksanakan penelitian.

## DAFTAR PUSTAKA
Akhila,  S.,  Sukanya,  V.  S.,  Anto,  A.,  & Karunakaran,  S.  (2018).  Prevalence  of endoparasites  in  captive  snakes  of  Kerala, India. Annals of Parasitology , 64(2).
Divers,  S.  J.,  &  Mader,  D.  R.  (2005).  Reptile Medicine  and  Surgery-E-Book.  Elsevier Health Sciences. Pp: 101.
Fuehrer,  H.  P.,  Igel,  P.,  &  Auer,  H.  (2011). Capillaria hepatica in man—an overview of hepatic capillariosis and spurious
infections. Parasitology  Research ,  109(4), 969-979.
Ingole,  D.  K.,  Senthilkumar,  K.,  Palanivelrajan, M.,  Gomathinayagam,  S.,  &  Jayathangaraj, M.  G.  (2015).  Successful  therapeutic management  of  helminthiasis  in  captive reticulated python. Indian Veterinary Journal , 92(8), 67-68.
Juncker-Voss,  M.,  Prosl,  H.,  Lussy,  H., Enzenberg,  U.,  Auer,  H.,  &  Nowotny,  N.,
(2000).  Serological  detection  of  Capillaria hepatica  by  indirect  immunofluorescence assay. Journal of Clinical Microbiology , 38(1), 431-433.
Klingenberg,  R.  (2007).  Understanding  Reptile Parasites. I5 Publishing. Pp: 87.
O'Shea, M. (2018). The Book of Snakes: A Life- Size  Guide  to  Six  Hundred  Species  from
Around  The  World.  University  of  Chicago Press. Pp: 68.
Pantchev, N., & Tappe, D. (2011). Pentastomiasis and  other  parasitic  zoonoses  from  reptiles and  amphibians. Berliner  und  Munchener tierarztliche  Wochenschrift ,  124(11),  528– 535.
Radhakrishnan,  S.,  Kurup,  S.  P.,  &  Banerjee,  P.
S.  (2009).  Endoparasitism  in  captive  wild ‐ caught  snakes  indigenous  to  Kerala, India. Zoo  Biology:  Published  in  affiliation with  the  American  Zoo  and  Aquarium
Association , 28(3), 253-258.
Rajesh,  N.  V.,  Rajesh,  K.  D.,  Jayathangaraj,  M. G.,  Raman,  M.,  &  Sridhar,  R.  (2015). Parasitic  fauna  of  captive  snakes  in Tamilnadu,  India. Asian  Pacific  Journal  of
Tropical Disease , 5(7), 547-551.
Raś-Noryńska, M., & Sokół, R. (2015). Internal parasites of reptiles. Annals of Parasitology , 61(2), 115-117.
Rataj,  A.  V.,  Lindtner-Knific,  R.,  Vlahović,  K., Mavri,  U.,  &  Dovč,  A.  (2011).  Parasites  in Pet Reptiles. Acta Veterinaria Scandinavica , 53(1), .33.
Rossi, J., & Rossi, R. (2012). What's Wrong With My Snake. I5 Publishing. Pp: 115.
Schmidt,  S.  (2001).  Investigation  on  the occurrence  of  Capillaria  hepatica  and metacestodes  of  Cyclophillida  in  wild  mice in  Germany  (Doctoral  dissertation,  PhD Thesis, University of Leipzig). Pp: 167.
Sosiawati,  S.  M.,  Koesdarto,  S.,  Bendryman,  S.
S., & Kusnoto. (2017). Penuntun Praktikum Ilmu Penyakit Helminth Veteriner. Fakultas Kedokteran  Hewan  Universitas  Airlangga. Surabaya. Hal: 37.
Wolf,  D.,  Vrhovec,  M.  G.,  Failing,  K.,  Rossier,
C.,  Hermosilla,  C.,  &  Pantchev,  N.  (2014). Diagnosis  of  gastrointestinal  parasites  in reptiles:  comparison  of  two  coprological methods. Acta Veterinaria Scandinavica , 56(1), 44. ***