Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
Pengaruh Suhu Penerimaan Sampel dan Bentuk Olahan Ikan Tuna ( Thunnus sp . ) Terhadap Kadar Histamin Menggunakan Metode Elisa
Effects of Sample Receiving Temperature and Form of Processed Tuna (Thunnus sp .) on Histamine Levels Using Elisa Method
Resti Nurmala Dewi 1* , Iftachul Farida 1
1 Prodi Pengolahan Hasil Laut Politeknik Kelautan dan Perikanan Jembrana Desa Pengambengan Kecamatan Negara Kabupaten Jembrana Provinsi Bali 82218; Telepon (0365) 4503980. Fax (0365) 4503980.
Email: restinurmaladewi@gmail.com 1 ) , faridaiftachul89@gmail.com 2 )
(Diterima: 06 Maret 2023; Diterima setelah perbaikan: 13 Juni 2023: Disetujui: 13 Juni 2023)

## ABSTRAK
Salah satu komoditas perikanan andalan Indonesia adalah ikan tuna ( Thunnus sp.) yang diekspor dalam berbagai bentuk olahan ke pasar ekspor internasional. Namun, kasus penolakan produk ikan tuna dari pasar ekspor saat ini cukup besar. Permasalahan utama kasus penolakan tersebut adalah kandungan bakteri  atau  kadar  histamin  yang  tinggi  pada  produk.  Oleh  sebab  itu,  penelitian  ini  dilakukan  untuk mengkaji  pengaruh  suhu  penerimaan  sampel  dan  bentuk  olahan  ikan  tuna  terhadap  kandungan histamin.  Sampel  ikan  tuna  telah  diuji  menggunakan  metode Enzyme  Linked  Immunosorbent  Assay (ELISA) terhadap perubahan suhu penerimaan sampel ikan dengan rentang suhu -0,1 sampai -0,5°C dan olahan tuna bentuk steak dan loin. Dari hasil penelitian, keseluruhan sampel ikan tuna mengandung kadar histamin <1 ppm. Perubahan suhu penerimaan sampel tidak memberikan perbedaan hasil yang besar terhadap kandungan histamin dengan  konsentrasi akhir  0,4  ppm. Bentuk  loin dan steak  pada sampel juga memiliki rata-rata kadar histamin yang tidak jauh berbeda, yaitu 0,6 dan 0,3 ppm.
Kata kunci: ELISA, ikan tuna, histamin, loin, steak

## ABSTRACT
One of Indonesia's mainstay fishery commodities is tuna (Thunnus sp.) which is exported in various processed forms to international  markets. However, cases of rejection are currently quite large. The main problem is due to the presence of bacteria or high levels of histamine. Therefore, this research was conducted to examine the effect temperature of receiving samples and the form of processed tuna on  histamine  content.  Tuna  were  tested  using  Enzyme  Linked  Immunosorbent  Assay  (ELISA)  with receiving temperature range of -0.1 to -0.5°C and processed tuna in the form of steak and loin. Based on the results, all samples contained histamine levels <1 ppm. The variation of receiving temperature did not give a notable difference with histamine content was merely at 0.4 ppm. Likewise, loin and steak had average histamine levels of 0.6 and 0.3 ppm. This means the shape of processed tuna did not affect concentration of histamine.
Keywords: ELISA, tuna, histamin, loin, steak

## PENDAHULUAN
Indonesia memiliki laut seluas 3.544 juta km 2 dengan kekayaan sumber daya perikanan yang melimpah (Pursetyo  et  al.,  2015) .  Hingga  saat  ini,  Indonesia  menjadi  salah  satu  penghasil komoditi  ikan  penting  di  dunia (Wahidi  et  al.,  2022;  Wodi  et  al.,  2018) .  Berdasarkan  data Kementerian Kelautan dan Perikanan (2021) , nilai ekspor produk perikanan pada tahun 2021 naik 11% dengan nilai sebesar USD 2,6 miliar dibandingkan dengan tahun sebelumnya yakni sebesar  USD  2,3  miliar.  Sedangkan  pada  tahun  2022,  nilai  ekspor  produk  perikanan diproyeksikan dapat mencapai USD 6,05 miliar.
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
Salah satu komoditi ekspor perikanan melimpah di Indonesia setelah udang adalah ikan tuna. Ikan tuna dapat diekspor dalam bentuk utuh maupun diolah menjadi beberapa bentuk seperti loin, steak dan lainnya dengan tujuan utama pasar ekspor adalah Uni Eropa, Amerika Serikat dan Jepang (Masinambou et al., 2022; Suryanto & Sipahutar, 2020) . Produk olahan tuna di pasar  ekspor  harus  memiliki  jaminan  kualitas  dan  keamanan  pangan  yang  tinggi.  Namun, kasus penolakan produk ikan tuna Indonesia masih banyak terjadi dari pasar ekspor Uni Eropa dan Amerika Serikat. Berdasarkan data dari The Food and Drug Administration (FDA) terdapat 97 kasus penolakan produk perikanan Indonesia ditahun 2020 dan salah salah satu penyebab utamanya  adalah  kandungan  histamin  yang  tinggi  akibat  penanganan  produk  yang  buruk (Nurani et al., 2016) .
Histamin adalah parameter yang konsentrasinya sangat dibatasi dan merupakan salah satu standar penting agar produk dapat diterima di pasar Amerika, Eropa dan Jepang. Histamin dikenal sebagai scromboid toxine yang dapat ditemukan dalam family scombridae seperti ikan tuna (Korashy & Farag, 2005). Aktivitas enzim histidin dekarboksilase dari bakteri merupakan salah satu penyebab munculnya histamin melalui reaksi dekarboksilasi asam amino histidin bebas (Sulistijowati & Moomin, 2021). Adapun bakteri yang berpengaruh pada pembentukkan histamin adalah Morganella morganii, Enterobacter aerogenes, Raoultella planticola, Hafnia, Klebsiella,  Escherichia,  Clostridium,  Lactobacillus,  Enterobacter  dan  Proteus dimana beberapa mikroorganisme tersebut secara alamiah ada dalam air laut (Utari et al., 2022). Pada konsentrasi  histamin  yang  melebihi  ambang  batas,  beberapa  efek  negatif  dapat  muncul terhadap  manusia  seperti keracunan.  Tubuh  manusia  tidak  dapat  mentoleransi  kandungan histamin  lebih  dari  100  mg/kg,  karena  hal  tersebut  dapat  memicu  gangguan  pada  sistem kardiovaskular seperti urticaria, hipotensi dan pusing, gantroenteritis, kejang perut, diare dan muntah (Prasetiawan et al., 2013; Sabry et al., 2019) . Food and Drug Administration (2011) menetapkan batas standar keamanan histamin adalah 50 ppm, sedangkan Standar Nasional Indonesia (SNI) 2354.10:2016 menetapkan baku mutu kadar histamin sebesar 100 mg/kg (100 ppm) (BSN, 2016) .
Histamin terbentuk akibat dari kerusakan tuna yang berlangsung cepat di daerah tropis karena rata-rata suhu lingkungan bersifat sangat ideal bagi pertumbuhan mikroba dan reaksi kimia di dalam tubuh ikan. Dalam penelitian ini, ikan tuna segar yang diolah menjadi bahan baku tuna loin  dan  steak  dicek  terlebih  dahulu  suhunya  untuk  mengetahui  seberapa  besar  pengaruh perubahan  suhu  penerimaan  sampel  pada  kandungan  histamin.  Hal  ini  dikarenakan  suhu penanganan ikan tuna juga memberikan efek terhadap kadar histamin akhir. Setelah itu, kadar histamin  pada  produk  tuna  yang telah  diproses dalam  bentuk  loin dan steak  dicek  kembali dalam  rangka memastikan  bahwa tahapan  proses pada  olahan tuna telah  berjalan  dengan baik demi menjamin produk perikanan yang aman.

## BAHAN DAN METODE
Proses  pengujian  histamin  dilakukan  di  PT  Seafood  Inspection  Laboratory.  Bahan  utama dalam  penelitian  ini  adalah  ikan  tuna  segar  yang  berasal  dari  Denpasar  Bali.  Sedangkan bahan-bahan  lainnya  seperti wash  buffer,  phosphate  buffered  saline, akuades, reagent conjugated  solution,  substrat  solution dan stop  solution merk  Merck  diperoleh  dari  Sigma Aldrich.
Tahapan proses yang dilakukan meliputi prosedur pengecekan suhu dan pengujian histamin. Mulanya, ikan yang telah dipotong disemprot dengan alkohol 70%. Setelah itu, ikan ditusuk dengan  termometer  AI368  Merk  TFA  untuk mendapatkan  suhu  pusat  ikan  tuna.  Ikan  yang telah  diketahui  suhunya  kemudian  dipotong  sebanyak  30 – 50  g  untuk  selanjutnya dihomogenkan  dengan  cara  dihaluskan  menggunakan  mortar  dan  diambil  sebanyak  10  g.
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
Sampel  lalu  diekstraksi  menggunakan  90  ml  akuades  dan  dihomogenkan  secara  manual dengan cara dikocok selama 20 detik. Campuran lalu didiamkan selama 5 menit dan diambil sebanyak  100  µl  untuk  dilarutkan  ke  dalam  10  ml  phosphate  buffer  saline  hingga  akhirnya ekstrak diperoleh.
Dalam penentuan kadar histamin, diperlukan 2 jenis well yaitu well merah dan putih. Mulanya, 100 µl reagen veratox conjugate solution diambil menggunakan mikropipet dan dimasukan ke dalam mixing well (well warna merah) sebagai kontrol dan sisanya dicampur dengan 100 µl sampel hasil ekstraksi dari proses sebelumnya. Masing-masing campuran di dalam well merah kemudian dihomogenkan. Setelah itu, campuran dipindahkan ke setiap antibody-coated well (well warna putih) serta diinkubasi selama 10 menit. Larutan antibody coated-well (well putih) kemudian  dibuang sedangkan  sampelnya  dicuci  dengan  larutan wash  buffer sebanyak tiga kali  pencucian.  Well  yang  telah  dicuci  dikeringkan  dengan  menggunakan  tisu  hingga  tidak terdapat sisa - sisa cairan yang masih menempel pada well putih. Selanjutnya, reagen veratox substrate solution dimasukkan ke dalam well putih dan diinkubasi selama 10 menit. Setelah selesai diinkubasi, 100 µl reagen veratox stop solution dimasukkan ke dalam well putih dan dihomogenkan  menggunakan  mikropipet.  Penambahan  larutan  ini  dilakukan  untuk menghentikan reaksi pada well antibody coated-well (well putih). Setelah substrat bereaksi, intensitas warna diukur pada panjang gelombang 650 nm menggunakan alat Neogen – StaFax 4700. Konsentrasi histamin dapat ditentukan langsung dengan kurva kalibrasi standar. Kurva kalibrasi  pada  penelitian  ini  dibuat  dengan  cara  membuat  larutan  standar  veratox  histamin (kontrol)  pada konsentrasi  0 ppm;  2,5  ppm;  10  ppm;  20  ppm;  dan 50  ppm. Masing-masing konsentrasi ini kemudian diuji absorbansinya dan diplotkan ke dalam grafik standar. Metode pengujian ini juga dilakukan pada sampel tuna bentuk loin dan steak.
Analisis data dalam penelitian ini menggunakan metode deskriptif kuantitatif. Data kandungan histamin pada berbagai suhu bahan baku ikan tuna segar dan bentuk loin serta steak disajikan dalam bentuk gambar (diagram) sehingga memberikan gambaran jelas mengenai pengaruh suhu dan bentuk olahan ikan tuna segar terhadap kandungan histaminnya.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Alur Proses Pembekuan Ikan Tuna Berbentuk Loin dan Steak
Menurut SNI 01-4104-2006, ѕ eluruh jenis tuna dараt diolah menjadi berbagai macam bentuk produk seperti loin dan steak. Nаmun pada umumnya bahan baku utama pembuatan olahan tuna аdаlаh madidihang, tuna sirip biru dan tuna mata besar (Ratri, 2021) . Adapun alur proses pembuatan tuna loin dan steak ditunjukkan oleh Gambar 1.
Ikan  tuna  yang  digunakan  sebagai  bahan  baku  ditangani  dengan  prinsip  3C  +  1Q  ( clean, careful, cold chain dan quick ) pada suhu kurang dari 4,4°C. Setelah itu, ikan disimpan pada ruang  penyimpanan  bahan  baku  sementara  yang  berisi  air  dan  es.  Saat  akan  diolah  lebih lanjut,  ikan  ditimbang  dan  dicuci  menggunakan  air  dengan  suhu  0-3°C  untuk  selanjutnya disiangi  melalui  pemotongan  kepala  ikan  dan  pembersihan  isi  perut  ikan.  Kemudian  ikan dibentuk  loin  dengan  berat  2 – 5  kg  (berdasarkan  ukuran  tuna)  dengan  memotong  bagian punggung dan perut menjadi 4 (Ratri, 2021) . Potongan ini kemudian dirapikan dari bagian- bagian yang tidak diperlukan sehingga selanjutnya dapat dibentuk menjadi steak dengan berat produk  20  g.  Pembagian  steak  tuna  dapat  dilakukan  dengan  melakukan  fillet  pada  bagian dekat  kepala  dan  ekor.  Potongan  ini  kemudian  dirapikan  kembali  dan  dibungkus  ke  dalam kemasan  untuk  selanjutnya  dihembuskan  gas  CO  selama  15  detik  agar  daging  ikan  tuna menjadi berwarna kemerahan. Baik ikan tuna loin maupun steak, keduanya didinginkan pada suhu -2 sampai 2°C untuk menjaga rantai dingin sistem. Produk ikan tuna selanjutnya dikemas dalam  kondisi  vakum,  dibekukan  dan  dicek  kandungan  logamnya  menggunakan metal
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
detector .  Ikan  tuna  yang  sudah  sesuai  spesifikasi  kemudian  ditimbang  beratnya,  dikemas, diberikan label dan disimpan di dalam cold storage .
Gambar 1. Alur Proses Pembekuan Tuna Bentuk Loin dan Steak
Pengaruh Suhu Penerimaan Sampel Ikan Tuna ( Thunnus sp. ) Terhadap Kadar Histamin Suhu  merupakan  salah  satu  parameter  yang  penting  dalam  pembentukkan  histamin. Pengaruh suhu penerimaan sampel ikan tuna terhadap konsentrasi histamin ditunjukkan oleh Gambar 2.
Gambar 2. Kadar Histamin pada Berbagai Suhu Penerimaan Sampel
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
Berdasarkan  Gambar  2  dapat  disimpulkan  bahwa  pengaruh  suhu  penerimaan  sampel  ikan tuna pada rentang -0,1 sampai 0,5°C dengan interval 0,1°C tidak memberikan efek yang besar terhadap kadar histamin dengan rata-rata 0,4 ppm. Menurut Silva et al., (2006) , suhu tinggi merupakan salah satu parameter penyebab kenaikan kadar histamin pada ikan. Dalam kondisi kelembaban  ideal  dan  suhu  di  atas 27˚C ,  mikroba  memiliki  laju pertumbuhan  yang  tinggi sehingga menyebabkan kadar histamin meningkat (Wodi et al., 2014). Penelitian (Kim et al., 1999) juga  menambahkan  bahwa  senyawa  amina  biogenik  dari  histamin  hanya  dapat terbentuk  pada  suhu  optimum  sebesar 25˚C. Pembentukkan  histamin  biasanya  terbentuk akibat  adanya  kesalahan  selama  proses  penanganan  dan  pengolahan  yang  berjalan  pada temperatur di atas 20 ˚ C (Wodi & Cahyono, 2021) . Hal ini diperkuat oleh pernyataan (Wang et al., 2020) bahwa histamin yang diproduksi oleh bakteri dapat terbentuk dengan optimal pada suhu 20 ˚ C dan pH netral.
Meskipun  suhu  rendah  dapat  mengontrol  bakteri  pembentuk  histamin,  tetapi  enzim  histidin dekarboksilase  yang  telah  terbentuk  akan  terus  menghasilkan  histamin  sekalipun  bakteri pembentuknya  tidak  aktif (Prasetiawan  et  al.,  2013) .  Hal  ini  dikarenakan  pada  suhu  yang mendekati  titik  pembekuan,  enzim  histidin  dekarboksilase  masih  bersifat  aktif.  Walau demikian, kadar histamin yang dihasilkan dalam penelitian ini tetap di bawah ambang batas berdasarkan analisis yang telah dilakukan. Hal ini menandakan bahwa penjagaan suhu pada penerimaan sampel sudah baik. Dengan begitu, fluktuasi suhu sampel pada ketelitian ±0,1°C masih dalam rentang kondisi yang aman untuk produk olahan tuna.
Pengaruh Bentuk Olahan Ikan Tuna ( Thunnus sp.) Terhadap Kadar Histamin
Bentuk olahan ikan tuna berupa loin dan steak mengacu pada Standar Nasional Indonesia SNI  7530.3:2009  dan  SNI  01-4485.3:2006 (BSN,  2006;  BSN,  2009).  Tuna  bentuk  loin  dan steak adalah produk olahan hasil perikanan dengan bahan baku tuna segar atau beku yang mengalami perlakuan seperti pada penjelasan di atas. Dalam proses produksi tuna loin dan steak, terdapat beberapa tahapan proses yang dapat mengganggu keamanan pangan akibat tidak terkendalinya sistem rantai dingin sehingga menyebabkan peningkatan kadar histamin (Santoso et al., 2020) . Pengaruh bentuk olahan terhadap kadar histamin pada penelitian ini ditunjukkan oleh Gambar 3.
Gambar 3. Kadar Histamin pada Berbagai Bentuk Olahan Loin dan Steak
0,7 0,5 0,6 0,5 0,7 0,3 0,3 0,4 0,4 0,4 0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 0,7 0,8 A1 B1 C1 D1 E1 Kad ar His tam in Kode Sampel
Rata-Rata Kadar Histamin (Ppm) Loin
Rata-Rata Kadar Histamin (Ppm) Steak
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
Sampel  dalam  bentuk tuna  loin dan  steak  dianalisis  kandungan  histaminnya menggunakan metode  ELISA (Enzyme  Linked  Immunosorbent  Assay). ELISA  adalah  metode  yang digunakan  melalui  pendekatan  serologis  berdasarkan  reaksi  spesifik  antara  antigen  dan antibodi. Metode  ini  memiliki  sensitivitas  dan  spesifisitas yang  tinggi  dengan menggunakan enzim sebagai indikator. ELISA bekerja dengan mengamati interaksi antara antigen antibodi yang teradsorpsi  secara  pasif  pada  permukaan  fase  padat  dengan  menggunakan  konjugat antibodi atau antigen yang berlabel enzim yang dapat berubah warna akibat adanya reaksi dengan substrat. Warna yang timbul dapat diukur dengan pembacaan nilai absorbansi pada ELISA plate reader (Thompson, 2010) . Nilai absorbansi yang diperoleh kemudian dikalibrasi ke dalam grafik standar.
Gambar 3 menunjukan bahwa produk ikan tuna loin dan steak memiliki kadar histamin yang tidak jauh berbeda yaitu dengan rata-rata sebesar 0,6 dan 0,3 ppm. Kadar histamin tersebut menandakan bahwa produk masih layak dikonsumsi sesuai dengan ambang batas histamin pada SNI 2354.10:2016, yaitu 100 ppm . (Santoso et al., 2020) menyatakan bahwa kandungan histamin pada ikan tuna tidak dapat dihilangkan dengan teknologi pengolahan sehingga kadar histamin pada produk ikan tuna akan selalu ada. Dalam pengolahan produk ikan tuna, faktor- faktor yang harus diperhatikan untuk menjaga kadar histamin adalah pelaksanaan SSOP dan GMP, penanganan ikan di atas kapal pada suhu di bawah 4,4˚C, rantai dingin, pencegahan kenaikan  suhu  dan  ketepatan kecepatan  alur  proses  yang  baik  (Mahusain  et  al.,  2017; Mercogliano & Santonicola, 2019). Namun demikian, kandungan histamin dapat muncul pada produk perikanan yang diakibatkan oleh beberapa faktor seperti pada proses pendaratan ikan dan pengolahan atau sistem distribusi ke konsumen. Oleh sebab itu, pemilihan bahan baku tuna yang baik sangat diperlukan dalam rangka menjaga mutu produk.
Selain itu, peningkatan kadar histamin pada produk tuna loin dan steak juga dipengaruhi oleh masalah  sanitasi  dan  hygiene  dalam  proses  penanganan  ataupun  pengolahan.  Kecepatan alur proses dan rantai pasok turut menentukan kualitas tuna yang dihasilkan (Janvier-James, 2012; Perdana et al., 2019) . Penelitian terdahulu yang dilakukan oleh (Suryanto & Sipahutar,
2021) menunjukkan bahwa kadar histamin pada ikan tuna loin hanya berkisar antara 4,27 – 7,51 ppm. Jumlah tersebut masih di bawah standar yaitu sebesai 50 dan 100 ppm. Sedangkan (Utari et al., 2022) melaporkan bahwa terdapat peningkatan konsentrasi histamin dari bahan baku segar ke produk tuna loin dari 0,52 ppm menjadi 0,96 ppm. Dengan demikian, bentuk olahan ikan tuna baik loin dan steak tidak memberikan pengaruh yang besar terhadap kadar histamin  selama  faktor-faktor  utama  pembentuk  histamin  dapat  dikendalikan  dengan  baik sehingga pada akhirnya dapat menghasilkan produk perikanan yang aman untuk dikonsumsi.

## KESIMPULAN DAN SARAN
Berdasarkan  uraian  di  atas  dapat  disimpulkan  bahwa  hasil  pengujian  ELISA  menunjukan keseluruhan sampel ikan tuna rata – rata mengandung kadar histamin <1 ppm baik sampel ikan  tuna  segar  maupun  dalam  bentuk  loin  dan  steak.  Dari  penelitian  ini,  pengaruh  suhu penerimaan sampel pada rentang -0,1 sampai 0,5°C dengan interval 0,1°C dan bentuk olahan tidak memberikan efek pada kadar histamin. Faktor-faktor utama yang memengaruhi kadar histamin adalah penanganan ikan di atas kapal, penerapan rantai dingin dan pelaksanaan alur proses  yang  baik.  Oleh  sebab  itu,  dapat  dipastikan  bahwa  penanganan  ikan  tuna  selama proses  pengolahan  telah  dilakukan  dengan  baik.  Kedepannya,  pengujian  histamin  dapat dilakukan  lebih  mendalam  berdasarkan  perubahan  suhu  dengan  rentang  0 – 30°C  serta terhadap jenis ikan tuna dan bentuk olahan tuna lainnya.
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index

## DAFTAR PUSTAKA
Badan  Standardisasi  Nasional.  (2006). SNI  01-4485.3  tentang  Penanganan  dan  Pengolahan  Tuna Steak . Jakarta: BSN. Badan Standardisasi Nasional. (2006). SNI 01-4104-2006 tentang Penentuan Suhu Pusat pada Produk Perikanan. Jakarta: BSN. Badan Standardisasi Nasional. (2009). SNI 7530.3 tentang Penanganan dan Pengolahan Tuna Loin . Jakarta: BSN.
Badan Standardisasi Nasional. (2016). SNI 2354.10:2016 tentang Penentuan kadar Histamin dengan Spektroflorometri dan Khromatografi Cair Kinerja Tinggi (KCKT) pada Produk Perikanan . Jakarta: BSN.
Food  and  Drug  Administration.  (2011). Fish  and  Fishery  Product  Hazards  and  Control  Guide . Washington:  Departemen  of  Health  and  Human  Service,  Center  for  Food  Safety  and  Applied Nutrition.
Janvier-James,  A. M. (2012). A New Introduction  to  Supply Chains and Supply Chain Management: Definitions and Theories Perspective. International Business Research , 5 (1), 194 – 207. Kementerian Kelautan dan Perikanan. (2021). Peringkat Indonesia sebagai Eksportir Produk Perikanan Dunia  Meningkat  di  Masa  Pandemi .  Diakses  pada  Tanggal  30  Juni  2022,  dari https://kkp.go.id/djpdspkp/artikel/33334-peringkat-indonesia-sebagai-eksportir-produk- perikanan-dunia-meningkat-di-masa-pandemi
Kim,  S.  H.,  An,  H.,  &  Price,  R.  J.  (1999).  Histamine  Formation  and  Bacterial  Spoilage  of  Albacore Harvested  off  the  U.S.  Northwest  Coast. Journal  of  Food  Science , 64 (2),  340 – 343. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.1999.tb15896.x
Korashy, N. T., & Farag, H. (2005). Histamine and Histamine Producing Bacteria  in Some Local and Imported  Fish  and  Their  Public  Health  Significance. Research  Journal  of  Agriculture  and Biological Sciences , 1 , 329 – 336.
Mahusain,  N.  A.  S.,  Bayoi,  F.,  Karim,  N.  U.,  Zainol,  M.  K.,  &  Danish-Daniel,  M.  (2017).  Changes  of Histamine  Levels  and  Bacterialgrowth  in  Longtail  Tuna, Thunnus  tonggol Stored  Atdifferent Temperature. Journal of Sustainability Science and Management , Special Issue (3), 38 – 46. Masinambou, C. D., Mentang, F., Montolalu, L. A. D. Y., Dotulong, V., Montolalu, R. I., Reo, A.  R., & Wonggo, D. (2022).  Pengujian  Kandungan Histamin  dan  Mutu Organoleptik  Bahan  Baku Ikan Tuna Thunnus albacares Kaleng. Media Teknologi Hasil Perikanan , 10 (3), 143 – 149. Mercogliano,  R.,  &  Santonicola,  S.  (2019).  Scombroid  Fish  Poisoning:  Factors  Influencing  the Production  of  Histamine  in  Tuna  Supply  Chain.  A  review. LWT , 114 ,  108374. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2019.108374
Nurani, T. W., Murdaniel, R. P. S., & Harahap, M. H. (2016). Upaya Penanganan Mutu Ikan Tuna Segar Hasil Tangkapan Kapal Tuna Longline Untuk Tujuan Ekspor ( Fresh Tuna Handling Quality for Tuna  Longliner  Caching  for  Export  Market ). Marine  Fisheries:  Journal  of  Marine  Fisheries Technology and Management , 4 (2), 153 – 162. https://doi.org/10.29244/jmf.4.2.153-162 Perdana, G. M. R., Sumiyanto, W., & Sipahutar, Y. H. (2019). Penetapan dan Pengendalian Titik Kendali Kritis Histamin pada Pengolahan Tuna Steak Beku ( Thunnus sp. ) Di PT. Permata Marindo Jaya Muara Baru - Jakarta Utara. Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam , 1 (1), 1. https://doi.org/10.15578/bjsj.v1i1.8421
Prasetiawan,  N.  R.,  Agustini,  T.  W.,  &  Ma’ruf,  W.  F.  (2013).  Penghambatan  Pembentukan  Histamin pada  Daging  Ikan  Tongkol  ( Euthynnus  affinis )  oleh  Quercetin  Selama  Penyimpanan. Jurnal Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia , 16 (2), 150 – 158.
Pursetyo,  K.  T.,  Tjahjaningsih,  W.,  &  Pramono,  H.  (2015).  Perbandingan  Morfologi  Kerang  Darah  di Perairan Kenjeran dan Perairan Sedati. Jurnal Ilmiah Perikanan Dan Kelautan , 7 (1), 31 – 33. Ratri, R. H. W. (2021). Panduan Penanganan Ikan Tuna untuk Ekspor . Pelabuhan Perikanan Samudera (PPS) Nizam Zachman: Jakarta.
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 5 (1), 2023, 55 - 62
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
Sabry, M. A., Mansour, H. A. E. A., Ashour, R. M., & Hamza, E. (2019). Histamine-Producing Bacteria and Histamine Induction in Retail Sardine and Mackerel from Fish Markets in Egypt. Foodborne Pathogens and Disease , 16 (9), 597 – 603. https://doi.org/10.1089/fpd.2018.2616 Santoso, A., Palupi, N. S., & Kusumaningrum, H. D. (2020). Pengendalian Histamin pada Rantai Proses Produk Ikan Tuna Beku Ekspor. Jurnal Standardisasi , 22 (2), 131 – 142.
Silva,  C.  C.  G.,  Ponte,  D.  J.  B.,  &  Dapkevicius,  M.  L.  N.  E.  (2006).  Storage  Temperature  Effect  on Histamine Formation in Big Eye Tuna and Skipjack. Journal of Food Science , 63 (4), 644 – 647. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.1998.tb15803.x
Sulistijowati,  R.,  &  Moomin,  D.  W.  (2021).  Mutu  Edible  Film  Karaginan  Kompleks  Ekstrak  Buah Mangrove  ( Sonneratia  alba )  dan  Hambatannya  Terhadap  Bakteri  Pembentuk  Histamin  pada Tuna Loin. Jambura Fish Processing Journal , 3 (1), 27 – 37.
Suryanto, M. R., & Sipahutar, Y. H. (2020). Penerapan GMP dan SSOP pada Pengolahan Udang Putih ( Litopenaeus vannamei ) Peeled Deveined Tail on (PDTO) Masak Beku di Unit Pengolahan Ikan Banyuwangi. Prosiding Seminar Kelautan dan Perikanan Ke VII P , 204 – 222.
Suryanto, M. R., & Sipahutar, Y. H. (2021). Kadar Histamin dan Nilai Angka Lempeng Total (ALT) pada Tuna Loin Berdasarkan Jumlah Hari  Penangkapan dan Ukuran  Ikan di Unit  Pengolahan Ikan, Surabaya. Prosiding Simposium Nasional VIII Kelautan dan Perikanan , 173 – 184.
Thompson,  M.  (2010). Immunoanalysis,  Basic  Principles  of  ELISA,  Analytical  Method  Committee . AMCTB No.45.
Utari, S. P. S. D., Dewi, R. N., & Febrianti, F. (2022). Analysis of Histamin Content in Loin Tuna ( Thunnus maccoyii ) in Denpasar, Bali. Berkala Perikanan Terubuk , 50 (3), 1685 – 1689.
Wahidi,  B.  R.,  Suseno,  A.,  Suseno,  D.  A.  N.,  Suseno,  D.  N.,  &  Hakimah,  N.  (2022).  Analisis  Kadar Histamin pada Produk Olahan Ikan Pindang di Kabupaten Sidoarjo, Jawa Timur Menggunakan ELISA. Samakia: Jurnal Ilmu Perikanan , 13 (2), 112 – 118.
Wang,  D.,  Yamaki,  S.,  Kawai,  Y.,  &  Yamazaki,  K.  (2020).  Histamine  Production  Behaviors  of  a Psychrotolerant  Histamine-Producer, Morganella  psychrotolerans ,  in  Various  Environmental Conditions. Current Microbiology , 77 (3), 460 – 467. https://doi.org/10.1007/s00284-019-01853-y Wodi, S. I. M., & Cahyono, E. (2021). Kajian Total Bakteri dan Kadar Histamin Tuna Pasca Tangkap di Perairan Sangihe. Jurnal Ilmiah Tindalung , 7 (1), 28 – 32.
Wodi, S. I. M., Trilaksani, W., & Nurilmala, M. (2014). Changesin Myoglobin of Big Eye Tuna During
Chilling Storage. Jurnal Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia , 17 (3), 214. https://doi.org/10.17844/jphpi.v17i3.8908
Wodi,  S.  I.  M.,  Trilaksani,  W.,  &  Nurilmala,  M.  (2018).  Histamin  dan  Identifikasi  Bakteri  Pembentuk Histamin pada Tuna Mata Besar ( Thunnus obesus ). Jurnal Teknologi Perikanan Dan Kelautan , 9 (2), 185 – 192.