POTENSI BAKTERI Serratia sp. SEBAGAI AGENSIA HAYATI PENYAKIT JAMUR AKAR PUTIH ( Rigidoporus microporus )
The potential of bacteria Serratia sp. as a  biological control of white root rot disease ( Rigidoporus microporus )
Cici Indriani DALIMUNTHE 1 , Ahmad DAHLAN 2 dan Radite TISTAMA 1
Balai Penelitian Sungei Putih 1 , PO BOX 1415 Medan 20001 Mahasiswa Universitas Panca Budi 2 , Jalan Gatot Subroto Km 4,5 Medan Email : cc_dalimunthe@yahoo.com
Abstract Serratia sp is the family Enterobacteriaceae gram-negative bacteria that have flagella Peritrik, motile and reported to be anti-fungal. Chitinolytic chitinase activity of bacteria are potentially used as a biological control against pathogenic fungi.The purpose of this research is to know the potential of bacteriaSerratia sp  in controlling white root rot disease caused by Rigidoporus microporus on the rubber plant in polibag. This research uses a  randomizedblock  design  (RAK)  nonfaktorial  with  5  treatments  and  5  replications.  Parametersmeasured were extensive white root fungus colony growth (cm) in the laboratory,white root fungus attack intensity (%) in polybag, the percentage of inhibition (%)in polybag and visual symptom of the white root fungus attack in polybag.  Thereault  of  this  showed  that  Serratia  sp  bacteri  application  infection  very  obvious  inobstructing extensive growth of the white root fungus colony in Laboratory, withthe lowest extensive of colony  3,06 cm on  D4  standard  (10ml/100  ml  PDA)  A  verysignificant  effect  in  reducing  the  intensity  of  white  root  fungus attacks the inhibition rate reached 54%, or healing reached 47,31% the age of 6 weeks after application.
Keywords: Bacteria Serratiasp, Rigidoporus microporus, Rubber Plant.

## PENDAHULUAN
Dalam  budidaya  karet  ( Hevea brasiliensis Muell.  Arg.)  penyakit  jamur akar  putih  (JAP)  adalah  penyakit  yang paling  merugikan  diantarapenyakit  akar lainnya.  Penyakit  yang  disebabkan  oleh Rigidoporus microporus merupakan penyakit  penting  dan  mengakibatkan kerusakan akar pada tanaman karet.Penyakit  ini  terutama  menular karena  adanya  kontak  antara  akar tanaman  sehat  dengan  akar  tanaman
sakit,  sedangkan  peranan  basidiospora yang  terkandung  didalam  tubuh  buahnya belum diketahui peranannya dengan pasti dalam penularan penyakit sampai sekarang (Fairuzah et al ., 2014).
Serangan  patogen  mengakibatkan akar  menjadi  busuk  dan  ditumbuhi miselia  jamur,  sehingga  akar  tidak mampu  lagi  menyerap  air  dan  hara mineral  dari  tanah  dan  menyebabkan tanaman karet menjadi mati (Febbiyanti, 2012).
Gambar 1. Badan buah jamur akar putih (Rigidoporus microporus) .
Upaya  pengendalian  secara  kimia sering menimbulkan residu pada lingkungan  dan  membunuh  organisme yang  bukan  sasaran.  Oleh  karena  itu, upaya  pengendalian  yang  efektif  dan ramah  lingkungan  perlu  dilakukan,  salah satunnya  adalah  dengan  menggunakan bakteri  kitinolitik  (pendegradasi  kitin) yang  melibatkan  enjim  kitinase.  Bakteri kitinolitik adalah bakteri penghasil enzim kitinase yang berperan dalam mendegradasi kitin menjadi N- asetilglokosamin. Organisme pen- degradasi  kitin  umumnya  berasal  dari kelompok  mikroorganisme  diantaranya adalah  dari  kelompok  bakteri.  Bakteri yang dilaporkan memiliki aktivitas kitinase  seperti Vibrio  furnissi,  Serratia marcescens,  Bacillus  circulans,  Bacillus turingensis subsp, pakistani dan Pseudomonas aeruginosa (Muharni,
2011).  Pengendalian  JAP  menggunakan
mirkroba  antagonis  pernah  dilaporkan Kusdiana et al (2015).
Serratia adalah  bakteri  gram negatif  famili Enterobacteriaceae yang memiliki  flagella  peritrik,  sehingga bersifat  motil.  Habitat Serratia terutama di air dan ditanah, pada permukaan daun, serta didalam tubuh serangga, hewan dan manusia  (khanafari et  al .,  (2006)  dalam kutipan Priyatno et al ., (2011).
Bakteri Serrati marcescens dilaporkan memproduksi prodigiosin yang bersifat anti fungi. Serratia marcescens  juga  merupakan  salah  satu organisme yang juga dapat menghasilkan enzim  kitinase  dan  menjadi  salah  satu dari  bakteri  yang  paling  efektif  untuk mendegradasi  kitin.  Sebagai  mana  telah diketahui  bahwa  stuktur  dinding  sel cendawan tersusun dari kitin, dengan demikian kitinase dari Serratia marcescens dapat menjadi
biopestisida untuk mengontrol organisme pengganggu  tanaman  yang  disebabkan oleh cendawan (Nasiroh et al. , 2012). Serratia spp  bakteri  gram  negatif diklasifikasikan ke dalam keluarga besar Enterobactericeae dan  bakteri  ini tumbuh  dengan  baik  pada  media  standar dan  menghasilkan  merah  untuk  pigmen gelap  yang  membantu  dalam  identifikasi dan pigmen warna merah yang disebut prodigiosin (Samrot et  al., 2011).  Prodigiosin  adalah metabolit sekunder multifaset. Kelompok prodigiosin  dari  produk  alami  adalah keluarga  tripyrrole  pigmen  merah  yang berisi  umum  4-metoksi  2,2  sistem  cincin bipyrrole.  Itu  biosintesis  pigmen  adalah proses  bercabang  di  mana  mono  dan bipyrrole prekursor yang disintesis secara terpisah  dan  kemudian  dirakit  untuk membentuk  prodigiosin  (Boger et  al.,
1988).  Banyak  jenis  dari  diferensial  dan media selektif telah dikembangkan untuk isolasi  dan  pengujian Serratia spp.
Capryllate thallous (CT) agar mengandung  kaprilat  sebagai  sumber karbon  untuk Serratia spp  dan  garam thallous sebagai inhibitor untuk organisme  lain  dan  CT  adalah  yang terbaik  di  memilih Serratia spp.  Media cair  biasa  saat  ini  sedang  digunakan untuk  biosintesis  prodigiosin  yang  kaldu nutrisi  (Shahitha  and  Poornima,  2012).
Pemanfaatan  bakteri  sebagai  alternatif pengendalian secara biologi telah dilakukan  yaitu  dengan  pengujian  genus Corynebacterium, Bacillus, Serratia
sp, dam Pseudomonas terhadap penekanan pertumbuhan JAP dilaboratorium. Hasil penelitian menunjukkan  bahwa  bakteri Serratia sp. Mempunyai  kemampuan  menghambat lebih baik  terhadap pertumbuhan jari-jari koloni jamur dibandingkan dengan kemampuan penghambatan bakteri lainnya  (Febbyanti  dan  Situmorang, 2008).
Tulisan  ini  membahas  tentang potensi bakteri Serratia sp dalam mengendalikan  penyakit  jamur  akar putih ( Rigidoporusmicroporus ) pada tanaman karet.

## METODE PENELITIAN

## Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium  Proteksi  dan  lapangan percobaan  Balai  Penelitian  Karet  Sungei Putih,  pada  ketinggian  80  m  dpl. Penelitian  dimulai  dari  bulan  April  -  Juli 2016.

## Bahan dan Alat
Bahan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  PDA  ( Potato DextroseAgar ) untuk media pertumbuhan jamur,  NA  ( Nutrient  Agar )  untuk  media
pertumbuhan  bakteri,  isolat Serratia  sp sebagi  agen  antagonis,  isolat  JAP ( Rigidoporus  microporus )  untuk  diuji antagonis hayati, bibit karet pada polibag yang  terserang  JAP  sebagai  bahan  untuk aplikasi Serratia sp  dan  tanah  sebagai media tanam. Alat yang digunakan antara lain,  cangkul,  polybag,  cat,  kertas  label, spidol, plani meter, petridish, erlenmeyer, handsprayer, alkohol, api spiritus,
aluminium poil, pemantik api, jarum ose, cork  borer,  autoclave,  laminar  air  flow, plastik  wrap,  batang  pengaduk,  corong, dan gelas beaker.

## Metode Penelitian
Metode penelitian yang digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah Rancangan  Acak  Kelompok  (RAK)  non faktorial dengan lima perlakuan (Aplikasi Serratia sp)  dan  lima  ulangan  yaitu terdiri dariD (Dosis): D0 = 0 % D1 = 2,5 % D2 = 5 % D3 = 7,5 % D4 = 10 %

## Metode Analisis Data
Metode analisis data yang digunakan  dalam  penelitian  ini  untuk menarik  kesimpulan  dalam  penelitian  ini adalah  dengan  metode  Rancangan  Acak Kelompok (RAK) non faktorial.
Yij = µ + αi + ß i + Σ ij
Keterangan :
Yij =  Respon  atau  nilai  pengamatan dari  perlakuan  ke  i  dalam ulangan ke – j
µ =  Nilai tengah umum
αi =  Pengaruh perlakuan ke i
βj =  Pengaruh blok j
∑ ij  =  Pengaruh galat percobaan dari perlakuan  ke  –  i  dalam ulangan ke – j
Persiapan  Inokulum  JAP (Rigidoporus microporus)
Biakan  isolat  jamur  akar  putih dibuat  dengan  cara  mengisolasi  badan buah jamur akar putih dari tanaman karet yang terserang penyakit JAP di lapangan. Bagian dari badan buah jamur akar putih tersebut  dipotong  –  potong  kecil  tanpa dilakukan  sterilisasi,  kemudian  diisolasi pada media PDA ( Potato Dextrose Agar ) lalu  di  inkubasi  selama  4-5  hari,  setelah tumbuh  miselia  cendawan  dilakukan pemurnian  isolat.  Biakan  murni  isolat jamur  akar  putih  diremajakan  dengan membuat  inokulum  cendawan  berbentuk lempengan  dengan  bantuan cork  borer steril,  kemudian  diinokulasikan  tepat  di tengah  medium  agar  pada  cawan  petri. Inokulum  JAP  murni  merupakan  bahan yang digunakan untuk aplikasi Serratia di laboratorium.

## Persiapan Bahan Tanam Karet
Bahan  tanam  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  adalah  stum  karet yang terserang penyakit jamur akar putih pada  tingkat  serangan  skala  2  (miselium telah  melekat  kuat  pada  kulit  atau diperkirakan  miselium  telah  masuk  ke kayu).  Jumlah  tanaman  yang  dibutuhkan dalam penelitian ini adalah 125 tanaman, dengan  jumlah  1  perlakuan/taraf  terdiri atas  5  tanamanyang  terserang  JAP.
Persiapan Bakteri Serratia sp.
Bakteri Serrati sp  diperoleh  dari hasil  eksplorasi  dari  tanah,  dengan  cara mengambil  sampel  tanah  dari  sekitar perakaran  tanaman  karet  terserang  JAP kemudian  tanah  di  kering  anginkan, ditimbang  sebanyak  5  gr  kemudian dilarutkan  di  dalam  tabung  reaksi  yang berisi air steril sampai homogen, kemudian  ditumbuhkan  sampel  tanah pada  media  NA  padat.  Setelah  itu,  akan tumbuhberbagai  macam  bakteri  dalam media  NA.  Bakteri Serratia sp  yang tumbuh diantar bakteri lainnya dimurnikan  dengan  cara  mengisolasi Serratia sp  dari  kumpulan  bakteri kedalam  tabung  reaksi  dan  cawan  petri, setelah itu di perbanyak dalam media NA cair.  Bakteri Serratia sp  yang  telah diinokulasikan di media NA cair kemudian  dimasukkan  dalam  mesin Shaker selama 3 hari.
Metode Aplikasi Serratia sp
Metode aplikasi Serratia sp dilakukan  dengan  sistem  siram.  Bakteri Serratia sp dilarutkan kedalam air sesuai dosis  yang  ditetapkan  kemudian  disiram kesekitar  perakaran  tanaman  karet  yang terserang  JAP.  Sebelum  aplikasi,  tanah polybag  terlebih  dahulu  disiram  air  satu hari  sebelum  aplikasi  hingga  kapasitas lapang.

## Parameter Yang Diamati
a. Luas  Pertumbuhan  Koloni  JAP (Rigidoporus  microporus) (cm) diukur  menggunakan  planimeter. Pengamatan  dilakukan  pada  2,  4,
6,  dan  8  HSI  (Hari  setelah inkubasi).
b. Intensitas Serangan JAP
(Rigidoporus  microporus) (%)  di Polybagdilakukan  sebelum  dan sesudah  aplikasi Serratia sp. Interval  pengamatan  dua  minggu sekali. Pengamatan intensitas serangan JAP dilakukan sebanyak tiga kali selama penelitian berlangsung. Pengamatan dilakukan  dengan  cara  membuka tanah  di  sekitar  leher  akar tanaman  karet  untuk  mengetahui kategori nilai serangan.
Nilai  kategori  serangan  diperoleh dengan  menghitung  jumlah  kategori serangan sebagai berikut:
Skala 0 = akar tanaman terbebas dari serangan R. microporus
Skala 1 =  Akar tanaman ditumbuhi
miselium R. microporus tetapi terbatas pada permukaan kulit
Skala 2 =  Miselium  atau  rhizomorf
telah  melekat  kuat  pada kulit ataudiperkirakanmiselium telah masuk ke kulit Skala 3 =  Bagian kulit telah membusuk Skala 4 =  Tanaman mati
Setelah  mengetahui  nilai  kategori serang  kemudian  ditentukan  intensitas serangan Rigidoporus microporus dengan menggunakan  rumus  dalam  Fairuzah et al ., (2014) sebagai berikut:
∑ ( n x v)
IS =     x 100% N x Z
Keterangan : IS   =  Intensitas serangan
n =  Jumlah  tanaman  dari  berbagai kategori serangan
v =  Nilai dari setiap kategori serangan
N  =  Jumlah akar tanaman yang diamati
Z =  Nilai  numerik  kategori  yang
tertinggi Persentase
penghambatan dihitung  dari  hasil  pengamatan  terakhir
dengan  menggunakan  rumus  sebagai berikut;
TE=ISP−ISA /ISP x 100 %

## Keterangan :
TE  =  Tingkat  Efikasi  (Persentase Penghambatan)
ISp  =  Intensitas  serangan  penyakit sebelum aplikasi
ISa = Intensitas serangan penyakit setelah aplikasi.  Data  persentase  penghambatan dianalisis  dengan  ANOVA  dilanjutkan dengan  uji  jarak  berganda  duncan  pada tingkat kepercayaan 5% (Fairuzah, 2014).
 Gejala  Visual  Jamur  Akar  Putih  di
Polybag.
Gejala  visual  yang  diamati  adalah  gejala makroskopis  miselium  JAP  sebelum  dan setelah  aplikasi Serratia sp  (Segar, kering, menguning dan membusuk).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Luas Pertumbuhan Koloni JAP (Rigidoporus microporus) (cm)
Hasil  pengukuran  rata  –  rata  luas pertumbuhan  koloni  jamur  akar  putih (cm)  di  laboratorium  dengan  perlakuan bakteri Serratia sp pada umur 2, 4, 6 dan 8  hari  setelah  inkubasi,  dilanjutkan penghitungan dengan menggunakan ANOVA  dan  Uji  Jarak  Duncan  (UJD) pada  tingkat  kepercayaan  5%.  Hasil penelitian memperlihatkan luas rata – rata pertumbuhan jari – jari koloni jamur akar
putih (Rigidoporus microporus) di laboratorium  interval  2,  4,  6  dan  8  hari setelah  inkubasi,  dengan  aplikasi  bakteri Serratia sp  setelah  diuji  beda  rata  –  rata
dengan  menggunakan  Uji  Jarak  Duncan (UJD)  pada  tingkat  kepercayaan  5% dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Rata – rata Luas Pertumbuhan Jari – jari Koloni Rigidoporus microporus (cm) Di
Laboratorium Interval 2, 4, 6 dan 8 Hari Setelah Inkubasi. Perlakuan Luas Pertumbuhan Koloni JAP (cm) 2 HSI 4 HSI 6 HSI 8 HSI D0 = Kontrol D1 = 2,5 ml/100 ml D2 = 5 ml/100 ml D3 = 7,5 ml/100 ml D4 = 10 ml/100 ml 6,76 a 3,06 b 2,44 b 2,44 b 2,20 b 38,70 a 17,64 b 9,64 b 10,98 b 2,86 c 64,16 a 31,48 b 17,94 b 17,22 b 3,06 c 67,46 a 43,24 b 28,08 b 24,88 b
3,06 c
Keterangan  :  Angka  –  angka  dalam  kolom  sama  yang  di  ikuti  dengan  huruf  yang  sama menunjukkan berbeda tidak nyata pada taraf 5%.
Pada  Tabel  1  dapat  dijelaskan bahwa  pemberian  bakteri Serratia sp pada  luas  pertumbuhan  koloni  Jamur Akar  Putih Rigdoporus  microporus di laboratorium  pada  pengamatan  2  HSI (Hari setelah inokulasi) sudah menunjukkan  perbedaan  yang  nyata terhadap kontrol, namun antar dosis tidak menunjukkan  perbedaan  yang  nyata. Pada  pengamatan  ke  4  HSI  terlihat  ada perbedaan  yang  nyata  perlakuan  D4 (dosis 10ml/100 ml PDA) bila dibandingkan  dengan  perlakuan  lainnya. Hal ini stabil sampai dengan pengamatan terakhir (8 HSI), di mana luas pertumbuhan  koloni  pada  perlakuan  D4 yakni  sebesar  3,06  cm  berbeda  nyata dengan kontrol sebesar 67,46%.
Hasil  penelitian  Febbiyanti  dan Situmorang (2008) dalam Fairuzah (2014) yang menyatakan bakteri Serratia sp  mempunyai  kemampuan  menghambat lebih  baik  terhadap  pertumbuhan  jari  – jari  koloni  jamur  dibandingkan  dengan kemampuan penghambatan bakteri lainnya.Nasiroh et al, (2012) menyatakan bahwa bakteri Serratia marcescens dilaporkan memproduksi prodigiosin yang bersifat antifungi. Serratia marcescens juga  merupakan  salah  satu organisme  yang  dapat  menghasilkan enzim  kitinase  dan  menjadi  salah  satu dari  bakteri  yang  paling  efektif  untuk mendegradasi  kitin.  Sebagaimana  telah dikerahui  bahwa  struktur  dinding  sel cendawan  tersusun  dari  kitin,  dengan
demikian kitinase dari Serratia marcescens dapat  menjadi  biopestisida untuk mengontrol organisme pengganggu tanaman yang disebabkan oleh cendawan. Intensitas  Serangan  JAP (Rigidoporus microporus) (%) Di Polybag
Hasil  penelitian  rata  –  rata intensitas  serangan  Jamur  Akar  Putih (JAP) (%) pada tanaman karet di polybag setelah  aplikasi  bakteri Serratia sp interval  2,  4  dan  6  MSA  dilanjutkan dengan penghitungan dengan menggunakan  ANOVA  dan  uji  Jarak Duncan  (UJD)  pada  tingkat  kepercayaan 5% dapat dilihat pada Gambar 2.
Setelah aplikasi Serratia sp menunjukkan  adanya  penurunan  skala, dari skala awal sebelum aplikasi Serratia sp  yaitu  berada  pada  skala  2  (miselium telah  melekat  kuat  pada  kulit  atau diperkirakan  miselium  telah  masuk  ke dalam  kayu)  turun  menjadi  skala  1  (akar
tanaman ditumbuhi miselium jamur tetapi terbatas  pada  permukaan  kulit)  –  skala  0 (akar  tanaman  terbebas  dari  serangan jamur  akar  putih).  Hal  ini  sesuai  dengan pendapat  Rahmiati et  al, (2015)  yang menyatakan  bahwa  salah  satu  agen pengendali  hayati  yang  saat  ini  sedang dikembangkan  adalah  bakteri  kitinolitik yang  menghasilkan  enzim  kitinase  yang dapat  melisiskan  dinding  sel  jamur patogen.  Yurnaliza et  al ,  (2011)  juga menyatakan  bahwa  jamur  umumnya memiliki  dinding  sel  yang  mengandung senyawa kitin, kehadiran mikroorganisme kitinolitik  di  tanah  terutama  pada rhizoplane  dan  filoplane  tanaman  dapat melindungi  tanaman  dari  infeksi  jamur. Kitin  yang  terdapat  pada  dinding  sel jamur  patogen  dapat  di  degradasi  atau dilisiskan oleh mikroorganisme kitinolitik sehingga  mengurangi  terjadinya  infeksi penyakit.
Gambar  2.  Intensitas  Serangan  JAP (Rigidoporus  microporus) (%)  Interval  2,  4  dan  6 Minggu Setelah Aplikasi Bakteri Serratia sp.
Pada  Gambar  2  dapat  dijelaskan
bahwa pengaruh aplikasi bakteri Serratia sp  pada  tanaman  karet  di polybag  yang  terserang  penyakit  jamur akar putih (Rigidoporusmicroporus) interval 2 MSA (Minggu Setelah Aplikasi)  menunjukkan  perbedaan  yang nyata. Intensitas serangan terendah terdapat pada perlakuan
D4
(10  ml/literair)  yaitu  42%  berbeda  nyata perlakuan dosis lainnya terutama terhadap  D0  (kontrol)  yang  intensitas serangannya yaitu 50%. Pada
pengamatan  ke 4  dan  6MSA, intensitas serangan  terendah  juga  masih  terdapat pada perlakuan D4 (10 ml/liter air).
Menurut  Ferniah dkk (2003) dalam  kutipan  Nasiroh et  al (2015) mekanisme serratia  marcescens sebagai bakteri  kitinolitik  terhadap  cendawan patogen  secara  umum  yaitu,  pertama bakteri  menghasilkan  senyawa  bioaktif,
dalam  hal  ini  enzim  kitinase  yang  dapat merusak  komponen  struktural  cendawan (mendegradasi kitin penyusun dinding sel cendawan).  Kedua,  senyawa  bioaktif bakteri mempengaruhi permeabilitas membaran sel cendawan tersebut, akibatnya  trasportasi  zat  –  zat  yang diperlukan  untuk  metabolisme  menjadi terganggu.  Gangguan  metabolisme  sel akhirnya  dapat  mengganggupertumbuhan cendawan.
Persentase  Penghambatan  JAP  (%)  di Polybag
Hasil penelitian dari nilai rata – rata persentase penghambatan atau tingkat  penyembuhan  setelah  aplikasi bakteri Serratia sp  pada  tanaman  karet yang terserang jamur akar putih (Rigidoporus  microporus) interval  2,  4 dan  6  MSA  (Minggu  Setelah  Aplikasi) setelah di  Uji  Jarak Duncan dapat  dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2. Rata –  rata  Persentase  Penghambatan  (%)  Jamur  Akar  Putih (Rigidoporusmicroporus) di  Polybag  Interval  2,  4  dan  6  Minggu  Setelah Aplikasi Bakteri Serratia sp Persentase Penghambatan Perlakuan 2MSA 4MSA 6MSA D1 (2,5 ml/1000 ml) 4c 26d 32c D2 (5 ml/1000 ml) 8b 40c 46b D3 (7,5 ml/1000 ml) 14a 44b 48a D4 (10 ml/ 1000 ml) 16a 50a 54a
Keterangan  :  Angka  –  angka  dalam  kolom  sama  yang  di  ikuti  dengan  huruf  yang  sama menunjukkan berbeda tidak nyata pada taraf 5%.
Pada Tabel 2 menunjukkan bahwa aplikasi bakteri Serratia sp pada perlakuan D4 (10 ml/liter air)
pada  tanaman  karet  yang  terserang penyakit jamur Akar Putih (Rigidoporusmicroporus) mampu
menghambat
serangan sebesar >50% pada pengamatan 6 MSA (minggu setelah aplikasi). Rahmiati (2013) menyatakan  bahwa  aktifitas  kitinase  dari bakteri kitinolitik sangat potensial digunakan  sebagai  pengendali  hayati penyakit  tanaman  terrmasuk  jamur  akar putih  yang  disebabkan  oleh Rigidoporus microporus. Menurt  Sriyanti  (2015), Terhambatnya pertumbuhan jamur disebabkan  karena  adanya  aktivitas antibiosis  bakteri  antagonis.  Senyawa yang  dihasilkan  oleh  bakteri  secara umum mengakibatkan terjadinya pertumbuhan  yang  abnormalpada  hifa, sehingga  mengakibatkan  hifa  tidak  dapat berkembang dengan sempurna.
Pembengkakan  yang  di  tunjukkan  oleh hifa  jamur  karena  senyawa  antibiotik yang  di  hasilkan  oleh  bakteri  dapat masuk kedalam sel patogen
dan menyebabkan protoplasmic dissolutin. Penghambatan  juga  bisa terjadi karena Serratia sp diduga
menghasilkan kitinase yang telah terbukti menghambat jamur patogen Fusarium sp (Apriliana & Herdyastuti 2016).
Gejala  Visual  Jamur  Akar  Putih  Di

## Polybag
Hasil pengamatan setelah pemberian  bakteri Serratia sp  pada tanaman  karet  terserang  penyakit  jamur akar putih di polybag berpengaruh sangat nyata  dalam  menekan  pertumbuhan miselium  JAP.  Sebelum  aplikasi  bakteri Serratia sp  terdapat  miselium  JAP  yang melekat  di  sekitar  leher  akar  tanaman karet  yang  terlihat  putih  segar  yang menyerupai  benang  dan  berada  pada skala  2  (Miselium  telah  melekat  kuat pada  kulit  atau  diperkirakan  miselium telah  masuk  ke  kayu).  Setelah  aplikasi Serratia sp  6  minggu  setelah  aplikasi menunjukkan,  miseliumJAP  mengalami perubahan  warna,  menjadi  berwarna kekuningan,  membusuk,  dan  bebas  dari serangan jamur akar putih. Hasil penelitian  setelah  aplikasi  antagonis bakteri Serratia sp  pada  tanaman  karet yang terserang JAP (Rigidoporus microporus) berpengaruh  sangat  nyata dalam menghambat pertumbuhan miselium  jamur  akar  putih  di  polybag. Seperti yang disajikan pada Gambar 3.
.
Gambar  3.  Miselium  JAP  Yang  Melekat  Pada  Leher  Akar  Tanaman  Karet  Sebelum Aplikasi Bakteri Serratia sp. (A) dan Miselium JAP yang Melekat Pada Leher Akar Tanaman Karet Sesudah Aplikasi Bakteri Serratia sp. (B)

## KESIMPULAN
Bakteri Serratia sp  memiliki potensi  sebagai  agensia  hayati  dalam mengendalikan penyakit jamur akar putih (Rigidoporus microporus) . Perlakuan terbaik  adalah  10  ml  suspensi  bakteri Serratia sp  per  liter  air  dengan  daya. hambatan  patogen  sebesar  54%  pada perakaran  tanaman  karet  di  polibag. Diharapkan  ada  penelitian  lebih  lanjut untuk mendapatkan informasi lebih detail mengenai  keefektifan  bakteri  Serratia dalam mengendalikan
Rigidoporus
microporus penyebab  penyakit  jamur akar putih pada tanaman karet.

## DAFTAR PUSTAKA
Apriliana, I. A dan N. Herdyastuti. 2016.
Kemampuan  Kitinase  Sebagai Anti jamur Terhadap Pertumbuhan Fusarium oxyporum
f.sp. capsici Pada Tanaman Cabai
Merah ( Capsicum annum ). UNESA  Journal  Of  Chemistry. http://ejournal.unesa.ac.id. Diakses pada 19 Agustus 2016.
Febbiyanti,  2012.  Penapisan  Jamur  dan
Bakteri Antagonis Terhadap Jamur  Akar  Putih  ( Rigidoporus microporus ) dari Rizosfer Tanaman Lidah Mertua
( Sansevieria  trifasciata  prain ).
2012.  30  (1)  :  1  –  11  Indonesia. J. Nat. Rubb. Res.
Febbyanti,  T.  R.  Dan  A.  Situmorang.
2008. Pengaruh Bakteri Antagonis Terhadap  Perkembangan  Patogen Penyebab Penyakit Karet. Prosiding LokakaryaNasional Agribisnis  Karet. Yogyakarta, 20 – 21 Agustus. Pusat Peneliitian Karet.: 356 – 361. Fairuzah, Z., C.I. Dalimunthe, S.
Suryaman., dan W. E. Widhayanti,  2014.  Keefektifan Beberapa Fungi Antagonis ( Trichoderma sp) DalamBiofungisida Endohevea
Terhadap Jamur Akar putih ( Rigidoporusmicroporus ) Di Lapangan. Jurnal Penelitian Karet, 2014, 32 (2) : 122 – 128. Ferniah.  RS.,  Pujianto.  S.,  Purwantisari. S.,  Supriyadi,  2009.  Interaksi Kapang Patogen Fusarium oxysporum Dengan Bakteri Kitinolitik Rizosfer Tanaman Jahe dan Pisang. Jurnal Natur
Indonesia 14 (1): 56-60
Khanafari,  A.,  M.M.  Assadi,  and  F.A. Fakhr, 2006. Review of prodigiosin, Pigmentation in Serratia  marcescens .  Biol.  Sci.
6:1 -13.
Kusdiana,  A.  P.  J.,  M.  Munir,  dan  H.
Suryaningtyas,  2015.  Pengujian Biofungisida Berbasis Mikroorganisme Antagonis Untuk Pengendalian Penyakit Jamur Akar  Putih  Pada  Tanaman  Karet. Jurnal Penelitian Karet, Indonesian J.  Nat.  Rubb  Res . 2015, 33(2) : 143 – 156.http://ejournal.puslitkaret.co.i d/index.php/128.  Diakses pada 20 maret 2016. Muharni dan H. Widjajanti, 2011. Skiring Bakteri Kitinolitik Antagonis
Terhadap  Pertumbuhan  Jamur Akar Putih ( Rigidoporus lignosus ) dari  Rizosfir  Tanaman  Karet. http://jpsmipaunsri.files.wordpres s.com.  Jurnal  Penelitian  Sains.
Diakses  pada  tanggal  07  maret 2016.
Nasiroh.  U.,  Isnawati,  Trimulyono.  G.,
Aktivitas Antifungi Serratia marcescens terhadap Alternaria porri Penyebab  Penyakit  Bercak
Ungu Secara in Vitro. http://ejournal.unesa.ac.id. Lenterabio.  ISSN  :  2252-3979. Diakses  pada  tanggal  07  Maret 2016. Rahmiati,  D.  Suryanto,  E.  Munir.  2015. Kemampuan Isolat Bakteri Kitinolitik  Dalam  Mengendalikan Penyakit Jamur Akar Putih (Rigidoporus  microporus)  Pada Bibit Tanaman Karet. http://rahmiati.blog.uma.ac.id. Diakses  pada  tanggal  21  Agustus 2016. Rahmiati,  2013.  Kemampuan  Isolat Kitinolitik Dalam Mengendalikina Penyakit JAP Rigidoporus mikroporus Pada  Bibit  Tanaman Karet. http://text.123dok.com.
Diakses  pada  tanggal  19  Agustus 2016. Samrot,  V.  Chadana,  K.  Senthil  kumar, P.  And  Narendra  kumar,  G. Optimization of prodigiosin production by serratia marcescens SU-10 and evaluation of  it’s  bioactivity, International research journal of biotechnology ,  2011  ;  Vol  2 (5).pp,128-133. Semangun,  H.  1991.  Penyakit-penyakit Tanaman Perkebunan di Indonesia. Gajah Mada University Press. Yogyakarta. Shahitha,  S  and  K.  Poornima,  2011. Enhanced Production of Prodigiosin Production in Serratia marcescens .  Journal  of  Applied
Pharmaceutical Science. http://www.japsonline.com/admin /php/uploads/605_pdf.pdf. Diakses  pada  tanggal  09  Maret
2016.
Situmorang,  A  dan  Budiman,  A.  2003. Penyakit tanaman karet dan pengendaliannya.  Balit  Sembawa Pusat Penelitian Karet.
Sriyanti,  N,  G.,  Dewa,  N,  S.,  dan Iketut,  S.  2015.  Uji  Keefektifan Rizobakteri  Dalam  Menghambat Pertumbuhan                        Jamur Colletotrichum spp.  Penyebab Antraknosa  Pada  Cabai  Merah
( Capsicum  annum L).  E-Jurna
Agroekoteknologi Tropika. http://ojs.unud.ac.id. Diakses pada 21 Agustus 2016. Priyatno,  T.  P.,  Yohana,  A.  Dahliani,  Y. Suryadi, I. M. Samudra, D.  N.  Susilowati,  I.  Rusmana, Baskoro,  S.  Wibowo  dan  C. Irwan. 2011. Identifikasi Entomopatogen  Bakteri  Merah pada  Wereng  Batang  Coklat (Nilaparvata lugens Stal.). http://biogen.litbang.pertanian.go. id.  Jurnal  Agro Biogen 7(2):85-
95.pdf
Wikipedia,  2013. Serratia  marcescens. Dari Wikipedia Bahasa Indonesia, Ensiklopedia Bebas. https://id.wikipedia.org.  Diakses pada tanggal 09 Maret 2016. Yurnaliza, S. margino, dan L, Sembiring.
2011. Kemampuan kitinase treptomyces  RKt5  sebagai  anti jamur  terhadap  patogen  fusarium oxysporum. Jurnal Natur Indonesia. http://download.portalgaruda.org diunduh  pada  tanggal  10  Agustus 2016.