## Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Larva Plectropomus leopardus Lacepède, 1802 (Actinopterygii:Serranidae) dengan Waktu Awal Pemberian Pakan Buatan Berbeda

## Regina Melianawati* dan Ni Wayan Widya Astuti
Balai Besar Riset Budidaya Laut dan Penyuluhan Perikanan Banjar Dinas Gondol, Ds. Penyabangan, Kec. Gerokgak, Buleleng 81155, Bali Email: regina.melnawati@yahoo.com

## Abstract
Larval Growth and Survival Rate of Plectropomus leopardus Lacepède, 1802 (Actinopterygii:Serranidae) Based on Different Initial Time of Artificial Feeding
Coral trout larvae in hatchery were given artificial feed, besides live feeds. However, the right time  for  feeding  artificial  feed  is  still  unknown.  Therefore,  the  purpose  of  this  is  study  was  to determine the differences initial time of feeding artificial feed on the growth of coral trout larvae. The treatment tested was feeding artificial feed to larvae started at 8 (A) and 15 (B) days old. The study  was  replicated  three  times.  The  observed  biological  variables  was  including  total  length, length  of  dorsal  and  pelvic fin  and  number  of  rotifers  in  larval  digestive  tract.  The  results  showed that on 30 days old, total length of larvae A llonger (13.36 ± 2.05 mm) than larvae B (12.13 ± 2.11 mm) (P>0.05). The dorsal fin and pelvic fin of larvae A tended were longer (7.33 ± 0.68 mm and 5.38 ± 0.45 mm) than larvae B (6.23 ± 1.58 mm and 5.29 ± 0.81 mm) (P> 0.05). On 20 days old, larvae A tended to consume more rotifers (32.60 ± 21.53 individuals) than larvae B (27.40 ± 11.19 individuals) (P>  0.05).  There  was  more  juveniles  produced  from  treatment  A  (79%)  compared  to  treatment  B (21%).  Based  on  this  study,  feeding  artificial  feed  started  from  8  days  old  take  effect  to  greater growth and survival rate of coral trout  larvae. Therefore, the initial time of feeding artificial feed for coral trout larvae should be done started at 8 days old.
Keywords: artificial feed; coral trout; larvae; growth; initial feeding time

## Abstrak
Larva  ikan  kerapu  sunu  dalam  pembenihan  di  panti  benih,  diberi  pakan  buatan,  disamping pakan alami sebagai pakan awalnya. Namun, hingga saat ini belum diketahui waktu yang tepat untuk  pemberian  pakan  buatan  tersebut.  Oleh  karenanya,  penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui perbedaan waktu awal pemberian pakan buatan terhadap pertumbuhan larva ikan kerapu sunu. Perlakuan yang diujikan adalah perbedaan waktu awal pemberian pakan buatan, yaitu mulai larva umur 8 hari (A) dan mulai larva umur 15 hari (B). Penelitian dilakukan sebanyak tiga kali ulangan waktu. Peubah yang diamati meliputi panjang total, panjang duri sirip punggung dan duri sirip perut, jumlah rotifer dan telurnya dalam pencernaan larva serta kelangsungan hidup. Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  pada  umur  30  hari  larva  A  memiliki  panjang  total  yang cenderung lebih besar (13,36±2,05 mm) dibandingkan pada larva B (12,13±2,11 mm) (P>0,05). Duri sirip  punggung  dan  duri  sirip  perut  larva  A  lebih  panjang    (7,33±0,68  mm  dan  5,38±0,45  mm) dibandingkan larva B (6,23±1,58 mm dan 5,29±0,81 mm) (P>0,05). Larva A umur 20 hari cenderung mengkonsumsi  rotifer  lebih  banyak  (32,60±21,53  individu)  dibandingkan  larva  B  (27,40±11,19 individu) (P>0,05). Juvenil yang dihasilkan dari perlakuan A lebih banyak (79%) dibandingkan dari perlakuan  B  (21%).  Berdasarkan  hasil  penelitian  ini,  pemberian  pakan  buatan  mulai  umur  8  hari berpengaruh  terhadap  pertumbuhan  dan  kelangsungan  hidup  larva  ikan  kerapu  sunu  yang cenderung  lebih  besar.  Oleh  karenanya,  pemberian  pakan  buatan  bagi  larva  ikan  kerapu  sunu sebaiknya dilakukan mulai umur 8 hari.
Kata kunci: pakan buatan; pertumbuhan; kelangsungan hidup; kerapu sunu; larva

## PENDAHULUAN
Ikan kerapu
sunu Plectropomus leopardus (Lacepède,  1802)  merupakan salah  satu  komoditas  perikanan  laut  yang bernilai  ekonomis  tinggi,  sehingga  tingkat eksploitasi terhadapnya cenderung meningkat (Mamauag et al., 2000). Eksploitasi yang  berlebih  dalam  jangka  waktu  panjang dikhawatirkan akan mengakibatkan terjadinya penurunan populasi di alam, yang pada  akhirnya  akan  berdampak  pada kelangkaan,  bahkan  kepunahan  jenis  ikan tersebut.  Sehubungan  dengan  hal  itu,  maka kegiatan  budidaya  terhadap  ikan  kerapu sunu  tersebut  penting  dilaksanakan  untuk menjaga kelestariannya di alam.
Balai  Besar  Riset  Budidaya  Laut  dan Penyuluhan Perikanan (BBRBLPP) sudah mulai melakukan  pembenihan  terhadap  ikan kerapu  sunu  (Suwirya,  2005)  dan  saat  ini benihnya  sudah  dapat  diperoleh  dari  hasil pembenihan  (Aslianti et  al., 2008).  Namun demikian,  kesinambungan  produksi  benih kadang  masih  terkendala  dengan  mortalitas yang  terjadi  pada  stadia  larva  (Melianawati et  al., 2007).  Secara  umum  ada  beberapa faktor yang diduga dapat menjadi penyebab  mortalitas  tersebut,  salah  satunya adalah faktor pakan (Ma et al., 2013). Pakan  merupakan  faktor  yang  penting karena  berfungsi  sebagai  pemasok  energi untuk  pertumbuhan.  Larva  yang  baru menetas membawa pakan endogen sebagai  sumber  pakan  awalnya  (Moteki et al., 2001).  Pada  larva  ikan  kerapu  sunu, pakan  endogen  yang  berupa  kuning  telur dan  butir  minyak  tersebut,  masing-masing akan  habis  terserap  pada  54  dan  63  jam setelah penetasan (Melianawati et al., 2012 a ). Setelah  pakan  endogen  habis,  maka  larva mulai memanfaatkan pakan eksogen sebagai  sumber  pakannya.  Masa  peralihan sumber  pakan,  dari  pakan  endogen  ke pakan eksogen, ditandai dengan keterbatasan  kemampuan  larva  untuk mencerna  pakan  eksogen  (Pedersen,  1993). Periode  ini  merupakan  salah  satu  fase  kritis dalam kehidupan larva dan tingkat mortalitias yang tinggi umumnya terjadi pada periode ini (Kohno et al., 1986).
Jenis  pakan  eksogen  yang  umum digunakan  sebagai  pakan  awal  adalah pakan  alami  berupa  zooplankton  (Lubzen
dan  Zmora,  2003).  Namun  demikian, pemberian  pakan  alami  tersebut  perlu diimbangi  dengan  penambahan  pemberian pakan buatan karena pakan buatan memiliki kandungan  nutrien  yang  lebih  lengkap  dan komposisi  nutriennya  dapat  disesuaikan dengan  kebutuhan  tubuh  ikan  itu  sendiri (Megahed & Aly, 2009; Pandey & Sahu, 2011). Pemberian  pakan  buatan  sendiri  juga  harus disesuaikan  dengan  kesiapan  larva,  terkait dengan  struktur  morfologis  dan  fisiologis, utamanya  pada  sistem  pencernaan  larva (Yúfera  &  Darias,  2007)  dan  jenis  serta komposisi  nutrien  yang  diperlukannya  sesuai dengan  tahapan  perkembangan  umur  dan kebutuhan larva (Dabrowski, 1984).
Beberapa hasil penelitian menunjukkan bahwa jenis larva ikan yang berbeda memiliki waktu  awal  pemberian  pakan  buatan  yang berbeda  pula.  Sebagai  contoh,  bagi  larva ikan  baung  ( Mystus  nemurus )  pemberian pakan buatan dilakukan  mulai larva umur 13 hari (Suryanti, 2002), pada ikan Sichel Pelecus cultratus (L.)  setelah  larva  berumur  12  hari (Kujawa et  al. 2016)  dan  pada  ikan  mas ( Carassius  auratus )  mulai  diberikan  pada minggu ketiga (Abi-Ayad & Kestemont, 1994). Hasil  penelitian  lainnya  menunjukkan  bahwa bagi  larva  ikan  kerapu  macan  ( Epinephelus fuscogutattus ),  pemberian  pakan  buatan dengan  kandungan  protein  dan  karbohidrat tinggi  dapat  dilakukan  mulai  larva  umur  11 hari, sedangkan pakan buatan yang banyak mengandung  lemak  dapat  diberikan  mulai larva  umur  17  hari  (Melianawati  dan  Pratiwi, 2011).
Hingga  saat  ini  belum  ada  penelitian yang  menunjukkan  waktu  pemberian  pakan buatan  yang  tepat  bagi  larva  ikan  kerapu sunu.    Oleh  karena  itu,  diperlukan  penelitian mengenai  waktu  pemberian  pakan  buatan yang  tepat  sehingga  pakan  buatan  yang diberikan  tersebut  dapat  digunakan  untuk pertumbuhan larva secara efektif dan efisien.
Pertumbuhan  merupakan  perubahan yang  dicapai  dalam  suatu  periode  waktu tertentu  dihubungkan  dengan  ukuran  pada awal periode waktu tersebut (Effendie, 1997). Salah  satu  ukuran  yang  biasa  digunakan untuk  mengevaluasi  pertumbuhan  ikan adalah  panjang  total  (Fishbase,  2019).  Larva ikan  kerapu  sunu  yang  merupakan  anggota famili  Serranidae,  juga  memiliki  ciri  yang spesifik berupa duri sirip punggung dan perut
yang  tumbuh  memanjang  hingga  periode waktu tertentu dan kemudian akan mereduksi  kembali  (Fukuhara  &  Fushimi, 1988).  Berdasarkan  hal  tersebut  maka  proses memanjang  hingga  mereduksinya  duri  sirip yang  terjadi  lebih  cepat  dapat  diasumsikan sebagai  pertumbuhan  yang  lebih  cepat pula.  Oleh  karenanya,  ukuran  panjang  duri sirip  tersebut  juga  dapat  menjadi  indikator pertumbuhan bagi larva ikan kerapu sunu.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui  pertumbuhan  larva  ikan  kerapu sunu  dengan  waktu  awal  pemberian  pakan buatan  yang  berbeda.  Hasil  penelitian  ini diharapkan  dapat  menjadi  acuan  dalam waktu  awal  pemberian  pakan  buatan  yang tepat yang dapat meningkatkan pertumbuhan larva.

## MATERI DAN METODE
Pemeliharaan larva dilakukan di dalam hatchery  semi  outdoor  di  BBRBLPP.  Hatchery tersebut  merupakan  sebuah  bangunan permanen  yang  dinding  bagian  bawahnya terbuat  dari  beton,  sedangkan  bagian  atas dindingnya  terbuat  dari  anyaman  bambu yang dilapisi  dengan terpal pada sisi bagian dalamnya.  Pemeliharaan  larva  dilakukan  di dalam  6  bak  pemeliharaan  larva  yang masing-masing bervolume 6.000 L dan diisi air laut  sebanyak  4.000  L.  Setiap  bak  dilengkapi dengan  12  titik  aerasi  sebagai  sumber oksigen  terlarut  dalam  media  pemeliharaan larva. Kecepatan aliran udara aerasi tersebut diatur  sesuai  dengan  perkembangan  larva. Pada  awal  pemeliharaan,  aerasi  diatur dengan kecepatan rendah sampai sedang.
Larva yang digunakan dalam penelitian  ini  berasal  dari  penetasan  telur hasil pemijahan alami induk ikan kerapu sunu yang  telah  didomestikasi  dalam  bak pemeliharaan  di  BBRBLPP.  Telur  yang ditetaskan  adalah  telur  yang  fertil,  berwarna jernih,  pada  saat  diseleksi  berada  dalam keadaan terapung dan menunjukkan adanya perkembangan embrio saat diamati secara  mikroskopis.  Kepadatan  telur  yang ditebar  dalam  bak  pemeliharaan  larva adalah  15  butir/L.  Estimasi  jumlah  larva  awal adalah 50.000 larva/bak.
Selama  pemeliharaan  larva,  kedalam bak pemeliharaan larva diberikan fitoplankton Nannochloropsis  oculata mulai pada  hari  pemeliharaan  kedua  pagi.
Pemberian  fitoplankton  dilakukan  dengan terlebih  dulu  menampung  fitoplankton  yang berasal  dari  kultur  massal  ke  dalam  bak fiberglass transparan volume 100 L, kemudian mengalirkannya  secara  perlahan  dengan menggunakan selang berdiameter 0,5 cm ke dalam bak pemeliharaan larva. Pakan alami berupa zooplankton rotifer Brachionus rotundiformis mulai  diberikan  pada  hari kedua  sore  dengan  kepadatan  awal  10 ind./mL.  Rotifer  yang  akan  diberikan, diperkaya  dulu  dengan  bahan  pengkaya komersial  yang  mengandung  asam  lemak dokosaheksaenoat (Melianawati dan
Andamari, 2010) untuk meningkatkan kualitas rotifer
sebagai pakan
larva. Proses pengkayaan  rotifer  tersebut  berlangsung selama  2  jam  (Melianawati et  al .,  2004). Zooplankton  lainnya,  Artemia  stadia  naupli, mulai  diberikan  pada  larva  umur  25  hari dengan  kepadatan  awal  5  ind/mL.  Larva juga diberi pakan buatan berupa mikro pellet komersial. Pemberian pakan buatan disesuaikan perlakuan yang diujikan.
Kualitas  media  selama  pemeliharaan larva  dijaga  dengan  melakukan  pergantian air  dan  penyiphonan.  Pergantian  air sebanyak sekitar 10% dari total volume media pemeliharaan  larva  dimulai  pada  saat  larva berumur delapan hari. Selanjutnya pergantian air ini dilakukan secara rutin setiap hari  dan  volumenya  semakin  ditingkatkan hingga  mencapai  100%.  Penyiphonan  pada bagian  dasar  bak  pemeliharaan  mulai dilakukan saat larva berumur 15 hari.
Perlakuan yang diujikan dalam penelitian ini adalah perbedaan waktu awal pemberian  pakan  buatan  berupa  mikro pelet, yaitu mulai diberikan pada larva umur 8  hari  (A)  dan  pada  larva  umur  15  hari  (B). Perlakuan  ini  didasarkan  pada  hasil  analisis perkembangan  aktivitas  enzim  pencernaan larva (Andamari & Suwirya, 2008). Pemberian pakan  buatan  dilakukan  setiap  hari  dengan frekuensi  pemberian  dua  kali  sehari  yaitu pada  pagi  dan  siang  hari.  Pakan  buatan yang  digunakan  adalah  pakan  komersial yang  partikelnya  berukuran  0,20-0,48  mm serta  memiliki  kadar  protein  48%  dan  kadar lemak  10  %  (Anonim,  2017).  Penelitian dilakukan  sebanyak  tiga  kali  ulangan  waktu. Ulangan  waktu  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  didasarkan  pada  ketersediaan telur  dari  hasil  pemijahan  induk  pada  waktu
yang  berbeda.    Penelitian  dilakukan  hingga larva telah bermetamorfosis menjadi juvenil.

## Sampel Larva dan Variabel Pengamatan
Sampel  diambil  pada  larva  umur  1,  5, 10,  15,  20,  25  dan  30  hari,  masing-masing sebanyak  5  ekor.  Pengambilan  sampel dilakukan  secara  acak  pada  setiap  ulangan waktu  penelitian.  Larva  diambil  secara  hati- hati  menggunakan  wadah  plastik  putih, kemudian dipindahkan dengan cara menggunakan pipet
yang ujungnya berdiameter
lebar,
selanjutnya menempatkan  larva  tersebut  di  atas single concave  slide  glass .  Larva  yang  digunakan sebagai sampel haruslah dalam kondisi hidup sehingga semua variabel yang diukur adalah sesuai dengan kondisi yang sebenarnya.
Variabel yang diamati meliputi panjang total,  panjang  duri  sirip  punggung,  panjang duri sirip perut dan jumlah zooplankton rotifer yang  terdapat  dalam  pencernaan  larva. Pengukuran  panjang  dilakukan  dengan mikroskop  stereoskopis  Olympus  SZH  yang sudah dilengkapi dengan mikrometer, sedangkan  penghitungan  jumlah  rotifer dalam  pencernaan  larva  dilakukan  dengan mikroskop  binokuler  Ohaus.  Data  yang diperoleh selanjutnya dianalisis secara statistik dengan uji t untuk mengetahui adanya beda nyata  diantara  kedua  perlakuan  yang diujikan (Rosner, 1995).  Pada akhir penelitian, yaitu  pada  saat  larva  telah  bermetamorfosis menjadi  juvenil,  yang  biasanya  terjadi  pada kisaran  umur  40-50  hari,  maka  dilakukan penghitungan  terhadap  jumlah  juvenil  dari masing-masing perlakuan.
Sebagai data dukung, dilakukan pula pengukuran  sampel  air  pada  media pemeliharaan  larva  yang  meliputi  suhu  air, salinitas,  pH,  oksigen  terlarut,  amonia  dan nitrit.  Pengukuran  suhu  air  dilakukan  dua  kali sehari  yaitu  pada  pagi  dan  siang  hari. Salinitas  dan  pH  diukur  sekali  sehari, sedangkan  oksigen  terlarut  diukur  seminggu sekali.  Kadar  amonia  dan  nitrit  diukur  pada larva  umur  6,  13,  21  dan  28  hari.  Data  hasil pengukuran dianalisis secara deskriptif.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa larva dari kedua perlakuan, mulai dari umur 1 sampai  dengan  20  hari,  memiliki  ukuran panjang  total  yang  hampir  sama  (Gambar
1).  Panjang  total  larva  perlakuan  A  pada umur  25  dan  30  hari,  masing-masing 10,48±1,55 mm dan 13,36±2,05 mm, cenderung lebih besar dibandingkan dengan pada  B  yang  masing-masing  9,53±1,15  mm dan 12,13±2,11 mm, meskipun secara statistik tidak menunjukkan beda nyata (P >0,05).
Larva  A  cenderung  berukuran  lebih besar  dibandingkan  larva  B  karena  larva  A telah  diberi  pakan  buatan  lebih  awal,  yaitu pada  umur  8  hari,  yang  berarti  bahwa  larva A  tersebut  telah  mendapatkan  pakan dengan  kandungan  nutrien  yang  lebih lengkap yang dapat mendukung perkembangan  pertumbuhannya  lebih  awal dibandingkan larva B. Hasil penelitian pendahuluan
menunjukkan bahwa aktivitas enzim pencernaan yang meliputi protease, amilase dan  lipase  telah  terdeteksi  pada  larva  ikan kerapu  sunu  umur  1  hari  meskipun  dengan kadar  yang  masih  rendah  (Melianawati  & Andamari, 2010). Hal ini berarti bahwa pakan buatan  yang  diberikan  sudah  dapat dihidrolisis  oleh  larva  dan  digunakan  untuk pertumbuhannya.  Pemberian  pakan  buatan yang  lebih  awal  dapat  pula  menjadi stimulator  bagi  produksi  enzim  pada pencernaan larva. Dalam hal ini keberadaan pakan  buatan  sebagai  substrat  akan berpengaruh  terhadap  pengaturan  aktivitas enzim  pencernaan.  Jumlah  enzim  yang disekresikan  antara  lain  dipengaruhi  oleh jumlah  pakan  (Pedersen  &  Andersen,  1992). Terkait  dengan  hal  tersebut,  produksi  enzim pencernaan pada larva A yang diberi pakan buatan  lebih  awal  menjadi  lebih  dulu  aktif sehingga  pakan  buatan  yang  diberikan dapat dihidrolisis dan dicerna oleh larva.
Gambar 1. Panjang  total  larva  kerapu  sunu yang diberi pakan buatan
Keberadaan pakan buatan dan pakan alami dapat  saling  melengkapi  kebutuhan  nutrien yang  diperlukan  oleh  larva  sehingga menghasilkan  pertumbuhan  yang  lebih  baik pada larva A.
Pertumbuhan  duri  sirip  punggung  larva dalam  penelitian  ini  mulai  terdeteksi  pada saat larva berumur 10 hari (Gambar 2). Larva A  memiliki  duri  sirip  punggung  yang cenderung  lebih  panjang  sejak  dari  umur  10 sampai  dengan  umur  30  hari  dibandingkan pada larva B.  Disamping itu, ukuran panjang duri  sirip  punggung  pada  larva  A  juga cenderung  lebih  seragam  dibandingkan pada larva B. Pada umur 25 dan 30 hari, duri sirip punggung pada larva A, masing-masing 6,76±0,78  mm  dan  7,33±0,68  mm,  cenderung semakin  lebih  panjang  daripada  larva  B, yang  masing-masing    5,58±1,09  mm  dan 6,23±1,58 mm, meskipun tidak berbeda nyata (P>0,05).
Seperti  halnya  duri  sirip  punggung,  duri sirip  perut  juga  mulai  terdeteksi  pada  larva umur  10  hari  (Gambar  3).  Ukuran  duri  sirip perut cenderung lebih pendek dibandingkan dengan  duri  sirip  punggung.  Gambar  3 menunjukkan bahwa larva A memiliki duri sirip perut  yang  cenderung  lebih  panjang  sejak dari  umur  10  sampai  dengan  umur  30  hari dibandingkan  pada  larva  B.    Duri  sirip  perut pada  larva  A  cenderung  lebih  seragam dibandingkan pada larva B. Kecenderungan tersebut  sama  seperti  halnya  pada  duri  sirip punggung.  Pada  larva  umur  25  hari,  ukuran panjang  duri  sirip  perut  larva  B  terlihat  lebih bervariasi, yaitu  3,28±1,55 mm, dibandingkan pada larva A yang ukurannya lebih seragam
Gambar 2. Panjang duri sirip punggung larva kerapu  sunu  yang  diberi  pakan buatan
Gambar 3. Panjang  duri  sirip  perut  larva kerapu  sunu  yang  diberi  pakan buatan
yaitu  4,97±0,58  mm.  Namun  demikian,  tidak terdapat  beda  nyata  pada  ukuran  panjang duri sirip perut dari kedua perlakuan tersebut (P>0,05).
Hasil tersebut menunjukkan bahwa duri sirip,  baik  punggung  maupun  perut,  pada larva A cenderung lebih panjang dibandingkan  pada  larva  B.    Hal  tersebut menunjukkan  bahwa  pemberian  pakan buatan  yang  lebih  awal  pada  larva  A menyebabkan  performansi  pertumbuhan yang  lebih  baik  karena  di  dalam  pakan buatan  tersebut  terkandung  nutrien  yang lebih  lengkap  dibandingkan  dengan  pakan alami zooplankton. Sebaliknya, pertumbuhan duri sirip pada larva B yang cenderung lebih kecil dan lambat dikarenakan lebih lambatnya pemberian pakan buatan sehingga  mengakibatkan  pula  terlambatnya pemenuhan kebutuhan nutrien yang sebenarnya  sudah  diperlukan  bagi  larva pada waktu tersebut.
Pemberian  pakan  buatan  lebih  awal juga  mengakibatkan  pertumbuhan  duri  sirip yang  cenderung  lebih  seragam  pada  larva A.  Sebaliknya,  pertumbuhan  duri  sirip  pada larva  B  cenderung  lebih  variatif,  utamanya pada larva umur 25 dan 30 hari. Kandungan nutrien  dalam  pakan  buatan  sangat berperan  dalam  mendukung  pertumbuhan larva, termasuk juga pertumbuhan pada duri siripnya.  Oleh  karenanya,  pemberian  pakan buatan  yang  lebih  lambat  pada  larva  B mengakibatkan  tidak  semua  larva  tercukupi kebutuhan nutriennya dalam masa pertumbuhan  awal  duri  tersebut  yang umumnya  terjadi  pada  umur  6-7  hari
(Sugama et  al., 2001)  atau  8-9  hari  sebelum waktu  awal  pemberian  pakan  buatan  bagi larva B.
Sebelum  adanya  pakan  buatan  maka larva  sepenuhnya  bergantung  pada  pakan alami  sebagai  satu-satunya  sumber  pakan. Kondisi  tersebut  mengakibatkan  pemenuhan kebutuhan  nutrien  larva  menjadi  terbatas. Akibatnya, meskipun kemudian larva mendapat asupan pakan buatan, tapi terjadi pertumbuhan  yang  tidak  seragam  dalam proses pertumbuhan larva selanjutnya, seperti yang  terlihat  pada  larva  B  umur  25  dan  30 hari.
Pakan  buatan  yang  diberikan  dalam penelitian  ini  memiliki  kadar  protein  cukup tinggi.  Bagi  ikan,  protein  merupakan  sumber energi  yang  utama.  Oleh  karenanya  larva  A yang  diberi  pakan  buatan  lebih  awal mendapat sumber energi yang lebih banyak dibandingkan  larva  B  yang  diberi  pakan buatan  lebih  lambat,  akibatnya  larva  A tersebut mengalami pertumbuhan yang lebih cepat.  Sebaliknya,  pertumbuhan  larva  B menjadi  cenderung  lebih  lambat  karena supply nutrien yang berasal dari pakan alami, dalam  hal  ini  utamanya  kadar  protein, diduga  sudah  tidak  dapat  lagi  mencukupi kebutuhan  larva  yang  semakin  meningkat seiring  dengan  bertambahnya  umur  larva. Hal  yang  sama  terjadi  pula  pada  larva  ikan kerapu bebek Cromileptes altivelis .
Pertumbuhan  larva  tersebut  yang  diberi pakan buatan lebih awal ternyata menunjukkan  performansi  yang  lebih  baik dan lebih seragam dibandingkan pada larva yang  diberi  pakan  buatan  lebih  lambat (Melianawati et al., 2012 b ).
Hasil  analisis  terhadap  isi  saluran pencernaan  larva  menunjukkan  bahwa jumlah  pakan  alami  rotifer  yang  dikonsumsi oleh  larva  meningkat  dengan  semakin meningkatnya  umur  larva  (Gambar  4a).  Di dalam  saluran  pencernaan  larva,  disamping rotifer,  ditemukan  juga  telur  rotifer  (Gambar 4b).  Rotifer  dan  telur  rotifer  yang  terdapat dalam saluran pencernaan larva A cenderung lebih banyak dibandingkan pada larva  B,  meskipun  secara  statistik  tidak menunjukkan adanya beda nyata (P>0,05).
Telur  rotifer  yang  ditemukan  dalam saluran  pencernaan  larva  diduga  terikut bersama dengan rotifer yang dikonsumsinya. Telur  rotifer  ditemukan  pada  larva  umur  15
(a)
(b) Gambar 4. Jumlah  rotifer  (a)  dan  telur  rotifer (b)  dalam  saluran  pencernaan larva  ikan  kerapu  sunu  yang diberi pakan buatan
dan  20  hari.    Hal  ini  menunjukkan  bahwa pada  saat  itu  rotifer  yang  diberikan  kepada larva  banyak  yang  sedang  dalam  kondisi membawa telur. Sebaliknya, pada larva umur 5  dan  10  hari  tidak  ditemukan  adanya  telur rotifer  dalam  pencernaan  larva.  Hal  ini mungkin  disebabkan  karena  dalam  kultur rotifer  yang  diberikan  sebagai  pakan  bagi larva  memang  tidak  terdapat  rotifer  yang membawa  telur.  Jumlah  telur  rotifer  yang lebih  banyak  dalam  saluran  pencernaan larva A menunjukkan bahwa larva A banyak mengkonsumsi rotifer yang sedang membawa  telur.  Hingga  saat  ini  memang belum  diketahui  secara  pasti  apakah  telur rotifer  tersebut  dapat  dicerna  oleh  larva. Namun  demikian,  keberadaannya  di  situ berarti  ikut  memenuhi  kapasitas  saluran pencernaan  larva  sehingga  perlu  untuk diperhitungkan.
Terkait  dengan  pertumbuhan  larva, terlihat  adanya  keterkaitan  antara  jumlah
pakan  alami  yang  dikonsumsi  larva  dengan performansi  pertumbuhannya.  Larva  A  yang memiliki  performansi  pertumbuhan  lebih  baik dibandingkan larva B ternyata dalam saluran pencernaannya terdapat rotifer dan telurnya dengan jumlah yang lebih banyak dibandingkan  pada  larva  B.  Bila  dikaitkan dengan  perlakuan  yang  diujikan,  terlihat bahwa pemberian pakan buatan yang lebih awal  pada  larva  A  ternyata  justru  dapat memacu  larva  untuk  mengkonsumsi  pakan alaminya lebih banyak.
Pakan  buatan  diduga  menjadi  stimulus untuk  meningkatkan  aktivitas  makan    larva. Stimulus tersebut  diduga berasal dari aroma pakan  buatan  yang  tajam  dan  disukai  oleh larva  sehingga  dapat  memacu  larva  untuk lebih  aktif  dan  lebih  banyak  mengkonsumsi pakannya,  dalam hal ini pakan alami rotifer dan  juga  pakan  buatan  itu  sendiri. Keberadaan  pakan  buatan  dalam  saluran pencernaan  larva  memang  agak  sulit  untuk dikuantifikasikan. Namun demikian, keyakinan bahwa  larva  mengkonsumsi  pakan  buatan terlihat  jelas  dari  respon  aktif    larva  untuk menangkap  dan  memakan  pakan  buatan pada  saat  diberikan.  Hal  yang  sama  juga terjadi  pula  pada  larva  ikan  kerapu  macan Epinephelus  fuscoguttatus ,  dimana  pada saluran  pencernaan  larva  yang  diberi campuran  pakan  alami  dan  pakan  buatan ditemukan  jumlah  pakan  alami  rotifer  yang lebih banyak dibandingkan pada larva yang hanya  diberi  pakan  alami  rotifer  saja (Melianawati et al., 2009).
Jumlah  juvenil  yang  dihasilkan  pada akhir penelitian dari perlakuan A adalah lebih banyak  (79%)  dibandingkan  dengan  yang dihasilkan  dari  perlakuan  B.  Hasil  ini menunjukkan pemberian pakan buatan yang dilakukan mulai larva umur 8 hari berpengaruh  terhadap  lebih  tingginya kelangsungan  hidup  larva  hingga  menjadi juvenil. Ketersediaan pakan
dengan komposisi  nutrien  yang  lebih  lengkap  sejak umur 8 hari dapat
meningkatkan kelangsungan hidup larva.
Hasil pengukuran kadar  amonia dalam media  pemeliharaan  larva  menunjukkan bahwa  pada  larva  umur  6  hari  kadarnya masih  relatif  rendah,  kemudian  meningkat pada  larva  umur  13  hari  dan  menurun kembali  pada  larva  umur  21  dan  28  hari (Gambar  5).  Peningkatan  kadar  amonia
dapat  disebabkan  dari  proses  penguraian sisa  metabolisme  dan  sisa  pakan  yang terdapat  di  dasar  bak  pemeliharaan.  Kadar amonia  yang  mulai  menurun  pada  larva umur 21 dan 28 hari disebabkan karena pada saat  itu  sudah  dilakukan  penyiphonan  pada bagian  dasar  bak  dan  pergantian  air  yang sudah mencapai 100%.
Kadar amonia pada media pemeliharaan larva A cenderung lebih tinggi dibandingkan  pada  media  pemeliharaan larva  B.  Hal  ini  dapat  disebabkan  karena pada larva  A sudah diberi tambahan pakan buatan  lebih  awal.  Pada  awal  pemberian pakan buatan tersebut, diduga belum semua larva  aktif  mengkonsumsi  pakan  buatan sehingga ada sebagian pakan buatan yang diberikan  tidak  dikonsumsi  oleh  larva  dan akhirnya  menjadi  polutan  dalam  media pemeliharaan  tersebut.  Kadar  amonia  yang tinggi  pada  media  pemeliharaan  larva  B dapat  disebabkan  oleh  plankton,  rotifer  dan juga  larva  yang  mati.  Pemberian  pakan buatan  yang  lebih  lambat  pada  larva  B mengakibatkan banyak larva yang mengalami  mortalitas  sehingga  banyak terjadi  penguraian  bahan  organik  tersebut. Hal ini terkait dengan lebih rendahnya jumlah juvenil yang dihasilkan dari perlakuan B pada akhir penelitian.
Hasil  pengukuran  kadar  nitrit  dalam media  pemeliharaan  larva  menunjukkan bahwa  kadar  nitrit  pada  awal  masa pemeliharaan  masih  sangat  rendah,  namun mulai meningkat pada larva umur 13 dan 21 hari  (Gambar  6).  Hal  ini  disebabkan  karena pada  waktu  tersebut  hanya  dilakukan pergantian  air  saja  dan  belum  dilakukan penyiphonan pada dasar bak pemeliharaan.
Gambar 5. Kadar  amonia  dalam  media pemeliharaan  larva  ikan  kerapu sunu yang diberi pakan buatan
Seperti  halnya  pada  kadar  ammonia, tingginya kadar nitrit  tersebut dapat disebabkan karena terjadinya proses penguraian  bahan  organik,  baik  dari plankton  yang  mati,  sisa  metabolisme  larva maupun  sisa  pakan  buatan  yang  tidak dikonsumsi  oleh  larva.  Meskipun  demikian, kadar  nitrit  tersebut  masih  berada  dalam kisaran  yang  aman  bagi  kehidupan  ikan (Boyd, 1982). Kadar nitrit menurun pada larva umur  28  hari  karena  pada  saat  itu  sudah dilakukan  penyiphonan,  disamping  telah mulai  dilakukan  pergantian  air  dengan volume  yang  sudah  mencapai  100%.  Terkait dengan  perlakuan  yang  diujikan,  nampak bahwa kadar nitrit dalam media pemeliharaan  larva  yang  diberi  pakan buatan  mulai  umur  8  maupun  15  hari cenderung hampir sama.
Hasil  pengukuran  pada  suhu  air, salinitas,  oksigen  terlarut  dan  pH  dalam media  pemeliharaan  larva,  baik  pada perlakuan  A  maupun  B,  menunjukkan  nilai yang  sama  dan  kesemuanya  masih  berada dalam  kisaran  yang  aman  bagi  larva  ikan (Tabel 1). Dengan demikian dapat dikatakan bahwa  media  pemeliharaan  larva  berada kondisi  yang  sesuai  bagi  kehidupannya selama penelitian ini berlangsung.
Gambar 6. Kadar nitrit dalam media pemeliharaan  larva  ikan  kerapu sunu yang diberi pakan buatan
Tabel 1. Data kualitas air selama pemeliharaan  larva  kerapu  sunu yang diberi pakan Parameter Pakan buatan d-8 Pakan buatan d-15 Suhu air ( o C) 28,05±1,05 28,05±1,05 Salinitas (ppt) 32,5±1,5 32,5±1,5 pH 8,2±0,5 8,2±0,5 DO (ppm) 6,4±0,8 6,4±0,8
Hasil  pengukuran  pada  suhu  air, salinitas,  oksigen  terlarut  dan  pH  dalam media  pemeliharaan  larva,  baik  pada perlakuan  A  maupun  B,  menunjukkan  nilai yang  sama  dan  kesemuanya  masih  berada dalam  kisaran  yang  aman  bagi  larva  ikan (Tabel 1). Dengan demikian dapat dikatakan bahwa  media  pemeliharaan  larva  berada kondisi  yang  sesuai  bagi  kehidupannya selama penelitian ini berlangsung.
Hasil  penelitian  ini  secara  keseluruhan menunjukkan  bahwa  pemberian  pakan buatan  pada  larva  ikan  kerapu  sunu  sudah dapat mulai dilakukan pada larva berumur 8 hari. Larva dengan pemberian pakan buatan mulai  umur  8  hari  memiliki  performansi pertumbuhan  dan  tingkat  konsumsi  pakan yang cenderung lebih baik serta kelangsungan  hidup  yang  cenderung  lebih baik dibandingkan dengan larva yang diberi pakan  buatan  mulai  umur  15  hari.  Oleh karenanya,  bagi  kalangan  pembudidaya ikan  kerapu  sunu,  pemberian  pakan  buatan mulai  larva  umur  8  hari  akan  lebih  memberi keuntungan  berupa  pertumbuhan  dan kelangsungan hidup yang lebih tinggi.
Bagi  jenis  ikan  kerapu  lain,  waktu  awal pemberian  pakan  harus  disesuaikan  dengan kondisi  fisiologis dari masing-masing jenis ikan tersebut.  Sebagai  contoh,  pemberian  pakan buatan  bagi  ikan  kerapu  batik Epinephelus microdon baru  dapat  dilakukan  pada  larva umur  15  atau  20  hari  (Marzuqi et  al .,  2001), sedangkan  bagi  ikan  kerapu  lumpur E. coioides pemberian  pakan  buatan  baru mulai  dilakukan  pada  larva  umur  17  hari (Aslianti  &  Priyono,  2005)  karena  larva  yang mulai  diberi  pakan  buatan  pada  umur tersebut  memiliki  pertumbuhan  yang  lebih baik dibandingkan dengan larva yang mulai diberi  pakan  buatan  sebelum  ataupun sesudah  waktu  tersebut.  Pemberian  pakan buatan bagi ikan kakap putih Lates calcarifer dimulai pada larva berukuran 5 mm (Curnow et  al .,  2006)  dan  bagi  ikan  greenback flounder Rhombosolea  tapirina pemberian pakan  buatan  dilakukan  pada  larva  ukuran 8-10 mm (Hart & Purser, 1996).

## KESIMPULAN
Perbedaan  waktu  awal  pemberian pakan  buatan  cenderung  berpengaruh terhadap  pertumbuhan  dan  kelangsungan
hidup  larva  ikan  kerapu  sunu.  Larva  dengan pemberian  pakan  buatan  mulai  umur  8  hari cenderung  memiliki  pertumbuhan  dan kelangsungan  hidup  yang  lebih  baik.    Oleh karenanya,  pemberian  pakan  buatan  bagi larva  ikan  kerapu  sunu  sebaiknya  dilakukan mulai umur 8 hari.

## DAFTAR PUSTAKA
Abi-Ayad,  A.,  &  Kestemont,  P.  1994. Comparison  of  the  nutritional  ( Carassius auratus )  larvae  fed  dry  diet. Aquacul. 128:163-176. doi: 10.1016/ 0044- 8486(94)90111-2.
Andamari,  R.  &  Suwirya,  K.  2008.  Korelasi antara  Umur  dan  Perkembangan  Enzim serta  Alat  Pencernaan  pada  Larva Kerapu  Sunu  ( Plectropmusleopardus ). Laporan Teknis Balai Besar Riset Perikanan Budidaya Laut, Tahun Anggaran 2008.
Anonim.  2017.  Japan  Love  Larvae  Feed. http://www.marinefishculture.com.
Diakses 28-11-2017.
Aslianti,  T.  &  Priyono,  A.  2005.  Respon  Awal Larva  Kerapu  Lumpur,
Epinephelus coioides terhadap Pakan Buatan.
Aquacult. Ind. 7(2):67-77.
Aslianti,  T.,  Suwirya,  K.  &  Asmanik.  2008. Teknologi  Pemeliharaan  Larva  Kerapu Sunu  ( Plectropomus  leopardus )  Secara Massal. J. Ris. Akuakultur . 3(1):1-11. Boyd,  E.C.  1982. Water  Quality  Management for  Pond  Fish  Culture .  Elsevier  Scientific Publishing  Company.  Auburn  University. Auburn, Alabama. 318 p.
Curnow, J., King, J., Bosmans, J. & Kolkovski, S.
2006. The Effect of Reduced Artemia and Rotifer Use Facilitated by ANew Microdiet in  the  Rearing  of  Barramundi Lates calcarifer (BLOCH)  larvae. Aquacul. 257:204-213.  doi:  10.1016/aquaculture. 2006 .02.073.
Dabrowski,  K.  1984.  The  Feeding  of  Fish Larvae:  “State  of  the  Art”  and Perspectives. Reproduc.  Nut.  Develop. 24(6):807-833. doi: 10.1051/rnd:198407 01 Effendie, M.I. 1997. Biologi Perikanan . Yayasan Pustaka Nusatama. Yogyakarta. 163p.
Fishbase.  2019. Plectropomus  leopardus . In Froese,  R.  &  Pauly,  D.  (Eds.).  Fishbase. www.fishbase.org. [02/19].
Fukuhara,  O.  &  Fushimi,  T.  1988.  Fin Differentiation and Squamation of
Artificial  Reared  Grouper Epinephelus akaara . Aquacult. 69:379-386.  doi:  10. 1016/0044-8486(88)90344-4
Hart,  P.R.  &  Purser,  G.J.  1996.  Weaning  of Hatchery-reared  Greenback  Flounder ( Rhombosolea  tapirina Günther)  from Live to  Artificial Diets: Effects of  Age and Duration  of  the  Changeover  Period. Aquacul. 145:171-181. doi: 10.1016/S0044- 8486(96)01343-9 Kohno, H., Hara, S. & Taki, T. 1986. Early Larval Development  of  the  Seabass Lates calcarifer with Emphasis on the Transition of  Energy  Sources. Bull.  Japan.  Soc.  Sci.
Fish. 52(10):1719-1725.
Kujawa, R.,  Kucharczyk, D., Grażyna Furgała– Selezniow,  G.,  Mamcarz,  A.,  Ptaszkowski, M.,  Biegaj,  M.    2016.  Substitution  of Natural  Food  with  Artificial  Feed  during Rearing Larvae of Sichel Pelecus cultratus (L.) under Controlled Conditions. Turkish J. Fish.
Aqua. Sci. 16:643-650. doi: 10.4194/130 3-2712-v16_3_18.
Lubzen, E. &  Zmora,  O.  2003. Production and Nutritional Value of Rotifers . In : Life Feeds in  Marine  Aquaculture.  J.G.  StØttrup  & McEvoy,  L.A.  (Eds.).  Blackwell  Science Ltd. 17-64 pp.
Ma, Z., Guo, H., Zhang, N. & Bai, Z. 2013. State of Art for Larval Rearing of Grouper. Int. J. Aquacul. 3(13):63-72. doi: 10.53
76/ija.2013. 03.0013
Marzuqi,  M.,  Giri,  N.A.,  Setiawati,  K.M.  & Suwirya,  K.    2001.  Pemeliharaan  Larva Kerapu  Batik  ( Epinephelus  microdon ) dengan  Awal  Pemberian  Pakan  Mikro pada  Umur  yang  Berbeda. Dalam Sudradjat,  A. et  al .,  (Ed.) Buku  Teknologi Budidaya Laut dan Pengembangan Sea Farming di Indonesia .pp.190-196.
Mamauag,  S.S.,  Donaldson,  T.J.,  Pratt,  V.R.  & McCullough,  B.  2000.  Age  and  Size Structure  of  the  Leopard  Coral  Grouper Plectropomus  leopardus (Serranidae: Epinephelinae), in the Live Reef Fish Trade of  the  Philippines. In Moosa,  M.K. et  al., (Eds). Proc. 9 th Int. Coral Reef Symposium, 2:649-656.
Megahed,  M.E.  &  Aly,  A.M.  2009.  Artificial Feed  and  Feed  Technology  for  Marine Finfish  and  Shellfish  Larvae-A  Review. Abbassa international journal for aquaculture, Special  Issue  for  Global
Fisheries & Aquaculture Research
Conference. pp 647-663.
Melianawati,  R.,  Suwirya,  K.  &  Pratiwi,  B.C.
2004.  Pengaruh  Lama  Pengkayaan terhadap  Kadar  Asam  Lemak  Essensial pada  Rotifer, Brachionus  rotundiformis . Prosiding  Seminar    Nasional  Hasil Penelitian  Pertanian,  Perikanan  dan Kelautan,  Universitas  Gadjah  Mada, Yogyakarta.
Melianawati,  R.,  Suwirya,  K.  &  Andamari,  R. 2007. Upaya Pemeliharaan Larva Kerapu Sunu  ( Plectropomus  leopardus ). Dalam Achmad
et al ., (Ed.). Buku "Pengembangan  Teknologi  Budidaya Perikanan", Pusat Riset Perikanan
Budidaya. Jakarta. pp. 408-414.
Melianawati,  R.,  Pratiwi,  R.  &  Astuti,  N.W.W.,
2017.  Pengaruh  Perbedaan  Waktu  Awal Pemberian  Pakan  Buatan  terhadap Pertumbuhan dan Aktivitas Enzim
Pencernaan  Larva  Ikan  Kerapu  Bebek Cromileptes altivelis (Valenciennes 1828). J. Biol. Ind. , 8 (2):
Melianawati,  R.  &  Andamari,  R.  2010. Pengaruh Perbedaan  Jenis  Bahan Pengkaya  pada  Rotifer  ( Brachionus rotundiformis )  terhadap  Aktivitas  Enzim
Pencernaan  dan  Pertumbuhan  Larva Ikan Kerapu Sunu Plectropomus leopardus . Aquacul. Ind., 9(2):105-111. Melianawati,  R.  &  Pratiwi,  R.  2011.  Pola aktivitas  enzim  pencernaan  larva  ikan kerapu macan ( Epinephelus fuscogutattus Forsskal,  1775). J.  Riset Akuakul., 6(1):51-61.  doi:  10.15578/jra.6. 1.2011.51-61
Melianawati,  R.,  Astuti,  N.W.W.  &  Suwirya,  K.
2012 a .  Produksi  Benih  Kerapu  Sunu Plectropomus  leopardus di  Balai  Besar Penelitian dan Pengembangan
Budidaya  Laut. Dalam Haryanti et  al .,
(Ed.). Prosiding  Indoaqua-Forum  Inovasi Teknologi Akuakultur . pp.139-148.
Melianawati,  R.,  Pratiwi,  R.  &  Astuti,  N.W.W.
2012 b . Pengaruh Perbedaan Waktu Awal Pemberian  Pakan  Buatan  terhadap
Pertumbuhan dan Aktivitas Enzim
Pencernaan  Larva  Ikan  Kerapu  Bebek Cromileptes altivelis (Valenciennes 1828). J. Biol. Ind., 8(2):329-342. doi: 10.15578/jra. 6.1.2011. 51-61
Moteki, M., Yoseda, K., Sahin, T., Üstϋndağ, C. &  Kohno,  H.  2001.  Transition  from Endogenous  to  Exogenous  Nutritional Sources in  Larval Black Sea turbot Psetta maxima . Fish.  Sci. 67:571–578.  doi: 10.1046/j.1444-2906.2001.00292.x Pandey,  B.D.  &  Sahu,  N.P.  2011.  Nutrient Composition  of  Artificial  Feeds  for Aquarium  Fishes. J.    Basic  App  Biol. 5(1):158-162.
Pedersen,  B.  H.  &  Andersen,  K.P.  1992. Induction  of  Trypsinogen  Secretion  in Herring  Larvae  ( Clupea  harengus ). Mar. Biol. 122:559-565.
Pedersen,  B.H.  1993.  Protein  Digestion  in
Herring Clupea harengus Larvae:
Trypsinogen  Secretion  and  Effect  of  A Transitory  Food  Restriction  on  Mortality, Growth and Digestive Enzyme Content. In Walter, B.T. & Fyhn, H.J. Physiological and biochemical aspect of fish development. pp. 220-225.
Rosner,  B.  1995. Fundamentals  of  Biostatistics 4 th eds. Duxbury Press.
Sugama,  K.,  Tridjoko,  Slamet  B.,  Ismi,  S., Setiadi,  E.&  Kawahara,  S.  2001. Petunjuk Teknis  Produksi  Benih  Ikan  Kerapu  Bebek Cromileptes altivelis . Balai Riset Budidaya Laut  Gondol  dan  Japan  International Cooperation Agency. 40 p.
Suryanti,  Y.  2002.  Perkembangan  aktivitas enzim  pencernaan  pada  larva/benih ikan  baung  ( Mystus  nemurus C.V.). J. Penelitian  Perikan.  Ind. 8(3):15-18.  doi: 10.15578/jppi.8.3.2002. 15-18
Suwirya,  K.  2005.  Spawning  and  Larval Rearing  of  Coral  Trout  at  Gondol. SPC Live Reef Fish Information Bull. 13:45. Yúfera,  M.  &  Darias.  M.J.  2007.  The  Onset  of Exogenous Feeding in Marine Fish Larvae. Aquacul. 268:  53-63.  doi:  10.1016/j.aqua culture.2007.04.050