## SKRINING BAKTERI ENDOFIT PERAKARAN PISANG SECARA
IN VITRO SEBAGAI AGEN PENGENDALI HAYATI TERHADAP PENYAKIT LAYU BAKTERI (Ralstonia solanacearum) PADA TANAMAN PISANG
(Screening of Bacteria Endophytic Rooting Bananas in Vitro for Biological Control Agents against Bacterial Wilt Diseases
(Ralstonia solanacearum) in Banana Plant
Dewi Hastuti 1 , Andree Saylendra 1 dan Eman Saeful Rohman 2
1 Staf Pengajar Jurusan Agoekotenologi Fakultas Peranian Universitas Sultang Ageng Tirtayasa
2 Alumni  Jurusan Agroekoteknologi,  Fakultas Pertanian Universitas Sultan Ageng Tirtayasa Jl. Raya Jakarta Km 4 Pakupantan Serang Banten Telp. 0254-280330,  Fax. 0254-281254, e-mail:dewihastuti.untirta@gmail.com

## ABSTRACT
This research aimed to find and identify isolates ofendophytic bacteria in  banana plants root to suppress bacterial wilt disease in banana plants (Musa paradisiaca) This research has been carried out in the Laboratory of Agroecology Department Faculty of Agriculture, Sultan Ageng Tirtayasa Universityfrom December 2012 to April  2013.This  research  used  a  completely  randomized  design  consisting  of  a single  factor  that  endophytic  bacteria  consisting  of  10  levels:  control  (without bacteria),  bacterial  endophyte  1,  bacterial  endophyte  2,  bacterial  endophyte  3, bacterial  endophyte  4,  bacterial  endophyte  5,  bacterial  endophyte  6,  bacterial endophyte 7, bacterial endophyte 8, bacterial endophyte 9. The treatment repeated 4 times. The parameter done are the percentage of inhibition, antagonism between endophytic bacteria test, test bacterial gram on endophytic bacteria, and bacterial morphology.  This  researchindicated,that  all  bacteria  hada  potential  antagonist  to inhibit Ralstonia solanacearum. Of the 60 isolates, 30 isolates showed the ability to  inhibit  the  growth  of  Ralstonia  solanacearum  in  vitro.  Totally  of  9  isolates were  selected  as  candidates  obtained  antagonist  belonging  to  Bacillus  sp.  Three isolates  that  had  the  best  inhibitory  ability  against  Ralstoniasolanacearum  were BE 10-812, 10-8 BE 13, and BE 10-8 29. These three isolates were identified as Bacillus sp.
Key words: Bacteria endophytic rooting bananas, Biological control agents,

## PENDAHULUAN
Salah  satu  masalah  utama dalam  budidaya  tanaman  pisang  di Indonesia  adalah  serangan  Ralstonia solanacearum,  yang  menyebabkan penyakit layu bakteri. Sejak penyakit ini  ditemukan  pertama  kali  oleh Ernst-Gaumann  di  Sulawesi  tahun 1906  (  Fegan,  2005),  produksi tanaman  pisang  di  Indonesia  terus menerus  menurun  dengan  sangat tajam.    Kehilangan  hasil  akibat penyakit ini dapat mencapai 10-42 % bahkan sampai 93,1 % pada serangan yang berat (Rukmana, 1997). Supriyadi  (2005)  melaporkan  bahwa penyakit  ini  menyebabkan  sekitar 963.360 tanaman pisang di Lampung selatan dan 1.101.000 tanaman pisang  di  Lampung  utara  mati. Sampai saat ini, penyakit layu bakteri masih menjadi masalah karena belum dapat dikendalikan. Hal ini menunjukan  bahwa  penyakit  layu bakteri  mempunyai  potensi  untuk terus  berkembang  dan  menjadi  salah satu kendala yang harus dipertimbangkan dalam rangka pengembangan  pisang  secara  besar- besaran.  Sebagai  penghuni  tanah, patogen  ini  dapat  bertahan  dalam berbagai  tanah  untuk  puluhan  tahun walaupun tanpa tanaman inang.
Salah satu upaya untuk mengendalikan  penyakit  layu  bakteri pada  tanaman  pisang  adalah  dengan pengendalian  hayati  menggunakan mikroorganisme antagonis yang relatif  aman  serta  ramah  lingkungan dibandingkan  dengan  penggunaan fungisida yang memberikan ancaman terhadap kualitas lingkungan, keseimbangan  ekosistem  maupun kesehatan manusia. Menurut    Baker  dan  Cook (1983), usaha penanggulangan penyakit tanaman dengan cara
biologis  mempunyai  peluang  yang cukup  cerah  karena  organismenya telah tersedia di alam dan aktivitasnya dapat distimulasi dengan memodifikasi  lingkungan,  seperti penggunaan bakteri endofit.
Bakteri  endofit  merupakan bakteri yang hidup di dalam jaringan tanaman  tanpa  merugikan  bahkan memberikan  banyak  manfaat  bagi tanaman  inangnya.  Bakteri  endofit melakukan  kolonisasi  pada  relung ekologi  yang  sama  dengan  patogen tanaman.  Sehingga  bakteri  ini  lebih cocok sebagai kandidat agens pengendali hayati. Hadiwiyono (2010), menemukan perbedaan
struktur  komunitas  bakteri  endofit pada tanaman pisang terinfeksi Blood Dasease  Bacterium  (BDB)  yang bergejala  penyakit  darah  dengan pisang yang tidak bergejala. Dilaporkan ada bakteri endofit tertentu  pada  pisang  yang  tidak bergejala  penyakit  darah,  tetapi bakteri  tersebut  tidak  dijumpai  pada pisang yang  bergejala  penyakit darah.  Bakteri  endofit  ini  diduga terlibat  dalam  menghambat  infeksi BDB pada tanaman pisang.
Berdasarkan informasi di atas maka  perlu  dilakukan  penelitian tentang  ‘skrining  bakteri  endofit perakaran  pisang  secara  in  vitro sebagai  agen  pengendali  hayati terhadap penyakit layu bakteri
(Ralstonia solanacearum) pada Tanaman Pisang (Musa paradisiaca).

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  ini  dilaksanakan  di Laboratorium    Agroekologi  Jurusan Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas  Sultan  Ageng  Tirtayasa pada  bulan  Desember  2012  sampai April 2013.
Bahan-bahan  yang  digunakan adalah bakteri Ralstonia solanacearum  yang  telah  diisolasi dari  akar  tanaman  pisang  sakit  dan bakteri  endofit  yang  telah  diisolasi dari  akar  tanaman  pisang  sehat  yang berasal dari Kampung Pareundeuhan, Desa  Waringin,  Kecamatan  Mancak, Kabupaten  Serang,  Banten,  KOH  3 %    TSA  (tripic  soy  agar),    aquades, SPA  (sukrosapepton  agar),  etanol, natriumhipoklorit,    deterjen  dan agar.
Penelitian  ini  menggunakan Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL) yang  rerdiri  atas  satu  faktor  yaitu Bakteri  endofit  yang  terdiri  dari  10 taraf yaitu:
BE0 = kontrol (tanpabakteri) BE1 = Bakteri Endofit Pisang 1
BE2 = Bakteri Endofit Pisang 2
BE3 = Bakteri Endofit Pisang 3
BE4 = Bakteri Endofit Pisang 4 BE5 = Bakteri Endofit Pisang 5 BE6 = Bakteri Endofit Pisang 6 BE7 = Bakteri Endofit Pisang 7 BE8 = Bakteri Endofit Pisang 8 BE9 = Bakteri Endofit Pisang 9 Apabila dari skrining 1 diperoleh  lebih  dari  9  isolat  yang menunjukkan  daya  hambat  tinggi terhadap pertumbuhan Ralstonia solanacearum  maka  jumlah  isolat terpilih  menyesuaikan.    Dari  data tersebut  kemudian  didapat  10  isolat bakteri  antagonis.  Perlakuan  diulang sebanyak 4 kali sehingga menghasilkan  40  satuan  percobaan.
Jika  hasil  anova  menunjukkan  nilai yang berbeda nyata maka dilanjutkan dengan  Duncan  Multiple  Range  Test (DMRT) pada taraf 5 %. Pengamatan morfologi  bakteri  endofit  bersifat deskriptif.

## Skrining I Isolat secara In vitro
Isolat  murni  dari  bakteri Ralstonia solanacearum diambil
dengan  menggunakan  jarum  ose. Kemudian  dimasukkan  ke  dalam tabung  reaksi  yang  berisi  air  steril sebanyak  10  ml  dan  dilakukan pengenceran  10 -1 -10 -4 ,  setelah  itu suspensi  dari  10 -4 diambil  sebanyak 0,1  ml  dengan  menggunakan  pipet tetes  dan  diteteskan  kedalam  media TSA kemudiandiratakan dengan spatula.  Selanjutnya  isolat  murni bakteri  antagonis  diambil  dengan menggunakan jarum ose dan diletakkan  di  tengah  petridish.  Uji pendahuluan dilakukan untuk memilih beberapa isolat yang diduga memiliki  potensi  agen  antagonis sebagai  agen  pengendali  hayati  layu bakteri. Penapisan agen hayati dilakukan  berdasarkan  mekanisme antagonis, seperti  yang dikemukakan Cook  dan  Baker  dalam  Maria  dan Widodo (2004) yaitu produksi antibiotik. Selanjutnya diamati perkembangan pertumbuhan Ralstonia  solanacearum  setelah  24 jam untuk melihat ada tidaknya zona hambatan  (zona  bening)  di  antara koloni bakteri dan Ralstonia solanacearum.  Isolat bakteri  endofit yang  menunjukkan  kriteria  +,  ++, dan  +++  selanjutnya  akan  diuji kembali pada tahap skrining II.

## Skrining  II  (Uji  Agen  Antagonis Secara in vitro)
Pada skrining II bakteri agens antagonis yang memiliki zona bening dengan  kriteria  +++  diuji  kembali untuk  menghitung  persentase  daya hambat.  Uji  lanjut  ini  dilakukan dengan  cara  menumbuhkan  koloni patogen  pada  media  TSA  suspensi dari 10 -4 diambilsebanyak 0,1 ml dan diteteskan  kedalam  media  TSA.
Isolat murni bakteri antagonis
kemudian  dimasukan  ke  dalam cawan  petri  dengan  cara  digoreskan dengan  ukuran  1  cm  dan  diinkubasi
pada  suhu  ruang  selama  tujuh  hari. Persentase penghambatan pertumbuhan koloni patogen dihitung berdasarkan modifikasi rumus  Maria  dan  Widodo  (2004) dengan  mengukur  jari-jari  koloni patogen pada kontrol (R 1 ) dan koloni jari-jaripatogenyang berhadapan dengan  goresan  bakteriendofit  (R 2 ). Persentase  daya  hambat  bakteri endofit dihitung dengan rumus =( X 100 %). Jika nilai rata-rata hambatan menunjukkan    berbeda  nyata  maka akan  diuji  lanjut  dengan  uji  jarak berganda Duncan pada selang kepercayaan 5 %. Morfologi  Koloni  Bakteri  Endofit (Bentuk, Tepi, Elevasi, dan
Warna)
Setelah  mendapatkan  kultur murni  maka  biakan  yang  diinginkan ditumbuhkan  ke  dalam  media  untuk dikenali  ciri  koloninya.  Ciri  koloni didasarkan  pada  ukuran  koloni,
bentuk  koloni,  bentuk  pinggiran koloni, permukaan koloni, dan warna koloni.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Tanaman pisang yang terinfeksi patogen layu bakteri ditunjukkan  dengan  menguningnya daun  ke  3  atau  ke  4  (Gambar  1a). Apabila  dibuat  potongan  melintang bagian  batang,  maka  akan  terlihat perubahan  warna  kecoklat-coklatan pada batang (Gambar 1b) dan setelah beberapa  saat  akan  muncul  eksudat bakteri  berwarna  putih  kotor  atau coklat  kehitaman  pada  permukaan irisan.  Gejala  tersebut  sama  dengan deskripsi  gejala  layu  bakteri  pada pisang yang  dikemukakan  oleh Supriyadi  (1999).  Isolasi  dilakukan di Laboratorium Agroekologi Fakultas  Pertanian  UNTIRTA  yang bersuhu harian rata-rata  28 0 C. a
b
Gambar.  Gejala  serangan  Ralstonia  solanacearum  pada  tanaman  pisang  (b), batang terserang dan batang sehat (a)
Hasil  identitas  skrining  awal  isolat  bakteri    yang  berpotensi  sebagai  agen antagonis yang didapatkan disajikan pada (Tabel 1).
Tabel 1. Skrining I aktivitas antibiotik bakteri endofit pada tanaman pisang
pengenceran10 -5 No Jenis Bakteri Endofit Aktivitas Antibiotik 1 BE 10 -5 41 - 2 BE 10 -5 42 - 3 BE 10 -5 43 - 4 BE 10 -5 44 +++ 5 BE 10 -5 45 +++ 6 BE 10 -5 46 ++ 7 BE 10 -5 47 +++ 8 BE 10 -5 48 + 9 BE 10 -5 49 - 10 BE 10 -5 50 ++ 11 BE 10 -5 51 ++ 12 BE 10 -5 52 +++ 13 BE 10 -5 53 - 14 BE 10 -5 54 - 15 BE 10 -5 55 - 16 BE 10 -5 56 + 17 BE 10 -5 57 - 18 BE 10 -5 58 - 19 BE 10 -5 59 - 20 BE 10 -5 60 - Keterangan: +++ = aktivitas antibiotik tinggi, ++ = aktivitas antibiotik sedang, + =
aktivitas antibiotik rendah, - = tidak ada aktivitas antibiotik
Dari  skrining  1  terdapat  30 isolat  bakteri  endofit  menunjukan kemampuan menghambat pertumbuhan  layu  bakteri  pada pisang. Rata-rata zona penghambatan terbentuk  pada  24  jam  setelah inokulasi,  tetapi  ada  juga  beberapa isolat bakteri antagonis yang
membentuk zona bening pada 48 jam setelah  inokulasi.  Adanya  perbedaan waktu  dalam  pembentukan  zona penghambatan  ini  diduga  karena kemampuan  isolat  antagonis  dalam menghambat  pertumbuhan  bakteri
Ralstonia
solanacearum yang berbeda-beda.  Dari  skrining  pertama kemudian  diambil  Sembilan    isolat terpilih  yang  mempunyai  aktivitas
antibiotik  tinggi  dan  dari  besarnya zona  bening  yang  terbentuk  untuk kemudian  di  uji  kembali  daya hambatnya.

## Daya Hambat Bakteri Endofit
Tabel 2 memperlihatkan kemampuan  daya  hambat  ke  9  isolat bakteri  endofit  yang  diuji  terhadap Ralstonia  solanacearum,  ke  9  isolat memberikan  pengaruh  sangat  nyata pada  parameter  daya  hambat.  Untuk perlakuan  kontrol  dan  BE10 -5 44 berbeda  tidak  nyata  namun  berbeda nyata  dengan  BE10 -5 47,  BE10 -5 45,
BE10 -3 40,  BE10 -8 12,  BE10 -8 13,
BE10 -8 10,dan BE10 -8 29 pada 7 HSI. Isolat-isolat  bakteri  antagonis  yang
diuji menunjukkan kemampuan yang sangat  nyata,  artinya  isolat-isolat bakteri  antagonis  yang  diuji  tersebut mempunyai  kemampuan  yang  relatif sama dalam menghambat pertumbuhan Ralstonia solanacearum secara in Vitro. Tabel 2 .Kemampuan daya  hambat bakteri  endofit terhadap pertumbuhan  bakteri Ralstonia  solanacearum  pada  pengamatan  setelah  inkubasi  (HSI)  pada skrining II Perlakuan Daya Penghambatan Rerata (%) 1HSI 2HSI 3HSI 4HSI 5HSI 6HSI 7HSI BE 10 -5 47 2.50 b  2.77 ab 2.78 ab  2.80 ab  2.80 ab  2.81 ab  2.81 ab BE 10 -5 44 2.50 b  2.50 c 2.50 b 2.50 b 2.51 b 2.51 b 2.51 b BE 10 -8 10 2.54 b  2.90 a 2.98 a 3.01 a 3.02 a 3.05 a 3.09 a BE 10 -8 29 2.79 a  2.85 ab 2.88 ab  2.9 a 2.93 a 2.94 a 2.96 a BE 10 -8 13 2.66 a  2. 80 ab 2.9 ab 2.94 a 2.88 a 2.94 a 2.97 a BE 10 -5 45 2.50 b  2.50 c 2.67 ab  2.77 ab  2.79 ab  2.8 ab 2.81 ab BE 10 -8 12 2.68 a  2.91 a 3.02 a 3.03 a 3.08 a 3.13 a 3.14 a BE 10 -8 20 2.50 b  2.72 abc 2.85 ab  2.85 a 2.87 a 2.19 a 2.94 a BE 10 -3 40 2.51 b  2.63 bc 2.72 ab  2.75 ab  2.78 ab  2.79 ab  2.75 ab Kontrol 2.5   b  2.5 c 2.5 b 2.5 b 2.5 b 2.5 b 2.5 b Keterangan: angka yang diikuti dengan huruf yang sama berbeda nyata pada uji jarak berganda Duncan ( α = 95%) pada kolom yang sama Bakteri endofit yang mempunyai kemampuan daya hambat terbesar terhadap pertumbuhan bakteri Ralstonia solanacearum  terdapat  pada  BE  10 -8 12,BE  10 -8 29,  BE  10 -8 13,  karena memiliki daya antagonis yang terbaik dari  1-7  hari  setelah  inkubasi  (HSI).
Hal  ini  disebabkan  karena  bakteri endofit dilaporkan mampu meningkatkan pertumbuhan tanaman,  menguraikan  dinding  sel patogen, dan menghambat pertumbuhan patogen dengan menghasilkan  seyawa  anti  mikroba seperti  siderofor  (Chandrasekhara dkk., 2007). Siderofor adalah seyawa organik  selain  antibiotik  yang  dapat berperan  dalam  pengendalian  hayati penyakit  tumbuhan  (Fravel,  1988 dalam  Diniyah,  2010).  Hallman
(2001)  menyatakan  bakteri  endofit mempunyai kemampuan untuk melindungi  tanaman  dari  patogen tular  tanah.  Kemampuannya  ialah untuk mengkolonisasi jaringan korteks akar dan memproduksi metabolit  yang  menekan  patogen untuk menginduksi
ketahanan tanaman.  Seyawa  antibiotik  yang dihasilkan  oleh  bakteri  antagonis dapat  berperan  langsung  sebagai bakterisida  terhadap  bakteri  patogen dan  agen  penginduksi  (elicitor) ketahan  tanaman  terhadap  penyakit (Lyon, 2007).
Morfologi Bakteri Endofit Uji  ini  dilakukan  dengan menumbuhkan  bakteri  endofit  ke beberapa  media  agar  TSA  yaitu media  cawan  petri,  media  agar miring,  dan  media  agar  tegak.
Selanjutnya  diinkubasi  selama  24 jam  pada  suhu  kamar.  Berdasarkan pengamatan  koloni  bakteri  endofit pada  Tabel  3,  pada  media  cawan petri menunjukkan perbedaan morfologi koloni bakteri. Bakteri BE
12  yang  memiliki  elevasi,  ukuran, bentuk,  dan  permukaan  yang  sama dengan  BE  13  akan  tetapi  berbeda pada  karakteristik  optik  dan  margin. Secara  keseluruhan  semua  koloni
endofit yang diuji pada media cawan petri  memiliki  elevasi  yang  sama.
Perbedaaan bentuk koloni
disebabkan  oleh  masa  inkubasi (Corbin,  2004).  Hasil  dari  pengujian menunjukan  bahwa  ke  9  isolat bakteri  uji  memiliki  karakteristik morfologi yang hampir sama berbentuk  bulat  beraturan  pada media cawan petri. Tabel 3. Morfologi bakteri pada beberapa media Hasil Pengamatan Cawan Petri Elevasi Ukuran Karakteristik optic Bentuk Permukaan Margin BE 12 Convex Large Opaque Circular Berkerut Lobate BE 13 Convex Large Translucent Circular Berkerut Entire BE 29 Convex Large Translucent Iragular Kasar Curled BE 20 Convex Large Opaque Circular Halus Entire BE 40 Convex Large Translucent Circular Halus Entire BE 47 Convex Large Opaque Circular Berkerut Entire BE 45 Convex Small Opaque Iragular Kering seperti bubuk Lobate BE 44 Convex Moder Opaque Felamenous Kasar Felamenous BE 10 Convex Large Translucent Circular Halus Entire Beberapa pengujian dilakukan untuk melihat karakteristik morfologi  dari  ke  sembilan  isolat bakteri endofit yang di uji. Hasil dari pengujian  menunjukan  bahwa  ke Sembilan  isolat  bakteri  uji  memiliki karakteristik morfologi yang sama. Tabel 4. Uji biokimia Isolat bakteri Uji gram KOH 3% Tahan panas Warna koloni BE 10 -5 47 + + Putih BE 10 -5 44 + + Putih BE 10 -8 10 + + Putih BE 10 -8 29 + + Putih BE 10 -8 13 + + Putih BE 10 -5 45 + + Putih BE 10 -8 12 + + Putih BE 10 -8 20 + + Putih BE 10 -3 40 + + Putih Berdasarkan Tabel 4, diketahui bahwa isolat bakteri endofit dari sembilan isolat memiliki karakteristik  morfologi  yang  sama. Sembilan isolat bakteri endofit
tersebut  menunjukan  koloni  yang berwarna  putih  pada  media  TSA, memiliki  gram  positif  berdasarkan
pengujian  reaksi  dengan  KOH  3  %.
Dari hasil identifikasi bakteri antagonis yang digunakan merupakan genus Bacillus sp. Menurut Corbin (2004) koloni Bacillus  sp.  memiliki  karakteristik umum memiliki warna krem keputihan  serta  berbentuk  bulat  dan tidak  beraturan  pada  masa  inkubasi 24-48 jam. Bakteri golongan Bacillus sp. merupakan bakteri yang berbentuk  batang  dan  tergolong bakteri  gram  positif  pada  kultur muda,  memproduksi  spora  yang biasanya resisten pada panas
(Cowan, 1974).

## SIMPULAN
Berdasarkanuraianhasilpeneli tian yang adamakadapatdisimpulkanbahwa: 1. Dari  60  isolat  bakteri  yang diperoleh,  30  isolat  bakteri menunjukkan  kemampuan  untuk menghambat pertumbuhan Ralstonia  solanacearum  secara in  vitro,  terdapat  9  isolat  yang memiliki  zona  bening  terbesar sebagai kandidat agen antagonis.
2. Tiga  isolat  dari  uji  antagonis yang  mempunyai  kemampuan penghambatan  terbaik  terhadap
Ralstonia  solanacearum  dari hari  pertama  sampai  hari  ke  7 adalah    BE  10 -8 12,  BE  10 -8 13, dan  BE  10 -8 29.  Dari  uji  sifat gram (+), tahanpanas, dan koloni bakteri  berwarna  putih.Ketiga isolate  bakteri  ini  diidentifikasi sebagai Bacillus sp.

## DAFTAR PUSTAKA
Badan Pusat Statistik. 2002. Produksi Tanaman Sayuran dan Buah-Buahan. Jakarta. Balitbang. 2007. Prospek dan pengembangan agribisnis: pisang. Jakarta: IAARD online. Badan Penelitian dan Pengembangan  Pertanian  – IAARD online\Balitbang
pisang.  Htm.    DIakses  1 Juni 2008.
Baker,  K.F.,  and  Cook  R.J.  1983. Nature  and  Practice  of
Biological  Control  of  Plant Phatogens.  Minnesota:  The American Phytopathology Society Press. Chandrashekhara.  2007.  Endophytic Bacteria from Different Plant Origin Enhance
Growth and Induce Downy Mildew Resistance in Pearl
Millet. http://www.scialert.net/qredi rect.php?doi=ajppaj.2007.1. 11&linkid=pdf - similarby- SN-Chandrashekhara–2007. Corbin, B.D.  2004.  Identification and Characterization Bacillus thuringiensis. J. Bacteriol. 186:7736–7744. Cowan, S.T. 1974.  Manual for Identification of Medical Bacteria. Cambridge
University Press. Cambridge Diniyah,  S.  2010.  Potensi  Isolat Bakteri Endofit sebagai Penghambat Pertumbuhan Bakteri(Ralstonia solanacearum)  dan  Jamur (Fusarium sp., dan Phytophora infestans) Penyebab  Penyakit  Layu pada Tanaman. Skripsi. Jurusan  Biologi  Fakultas Sains dan Teknologi. Malang: UIN (Tidak dipublikasi). Fegan,  M.  2005.  Bacterial  Wilt Disease of Banana in: In: C.
Allen, P. Prior, A.C. Hayward.  Bacterial  Wilt Disease  and  the  Ralstonia solanacearum Species Complex. American Phytopathological Society Press, Minnesota. Hadiwiyono, S. Subandiyah, C. Sumardijono, J. Widada, & M. Fegan. 2006. Detection of Blood Disease Bacterium
Using Polymerase Chain Reaction with Microlysis
Kit for DNA Template
Preparation.  Makalah Seminar Nasional Hasil Pertanian. UGM. Yogyakarta. Hallmann, J., 2001. Plant  Interaction
With  Endophytic  Bakteria. In:  Jeger,  M.J.  And  spence, N.J., editor. Biotic Interaction in Plant- Pathogen Associations. CAB  Internasional.  P.  87- 119.
Lyon, G. 2007. Agents that Can Elicit Induced Resistance. In: Walters, D., Newton, A., Lyon, G. Editor. Induced Resistance for Plant Defence: Sustainable Approach to Crop
Protection. Blackwell Publishing. pp.9-30. Marya  dan  Widodo.  2004.  Potensi Bakteri Rizosfer dan Endofit  pada  Akar  Pisang dalam Pengendalian Penyakit  Layu  Fusarium. Hal. 67-72. Rukmana, R. 1997. Kentang Budidaya  dan  Pascapanen. Yogyakarta: Kanisius. Supriyadi. 1999. Karakteristik Kultur dan Patogenesitas Isolat Ralstonia solanacearum Penyebab  Penyakit  Darah pada Tanaman Pisang.
Jurnal  Holtikultura  9(2)  :
129-136. Supryadi.  2005.  Present  Status  of
Blood  Disease  in  Indonesia.
In:  C.  Allen,  P.  Prior,  A.C. Hayward.  Bacterial  Wilt Disease  and  the  Ralstonia solanacearum Species Complex. American Phytopathological Society Press, Minnesota.