Abstrak—Telah  dilakukan  kajian  geokimia  organik  pada sampel  minyak  mentah  Blok  Cepu  untuk  mengetahui  sumber asal-usul  senyawa  organiknya  sebagai  data  pendukung  proses reaktivasi  sumur  tua  kawasan  tersebut.  Kajian  geokimia organik  dilakukan  melalui  analisa  biomarka  dengan  metode ekstraksi,  fraksinasi  dan  identifikasi  struktur  menggunakan instrumen  Kromatografi  Gas-Spektrometer  Massa  (KG-SM). Hasil identifikasi menunjukkan adanya distribusi bimodal pada n-alkana yang mengindikasikan senyawa organik pada sampel minyak  Cepu  tidak  hanya  berasal  dari  satu  sumber.  Hal tersebut  didukung  dengan  keberadaan  kelompok  biomarka seskuiterpana  (4β(H)-eudesmana,  drimana),  sterana  (trans- trans-trans-bikadinana, 5α(H)-22-kolestena), hopanoid, derivat naftalena  (1,2,5-TMN;  1,2,5,6-TeMN;  1,3,6,7-TeMN)  serta aromatik  triterpenoid  pentasiklik  sebagai  indikator  senyawa organik  pada  minyak  Cepu  berasal  dari  tumbuhan  tingkat tinggi, bakteri, alga dan fitoplankton.
Kata Kunci—Alifatik, Aromatik, Biomarka, Blok Cepu, Minyak Mentah.

## I. PENDAHULUAN
EBUTUHAN  akan  energi,  terutama  minyak  bumi  di Indonesia  meningkat  setiap  tahunnya  mengikuti pertumbuhan  ekonomi,  penduduk,  harga  energi,  dan kebijakan  pemerintah.  Minyak  bumi  diproyeksikan  masih menjadi  sumber  energi  utama  di  Indonesia,  terutama  di bidang  transportasi,  sebab  penggunaan  teknologi  berbahan bakar minyak bumi masih lebih efisien dibanding peralatan lainnya  [1].    Namun  peningkatan  akan  kebutuhan  tersebut tidak sebanding dengan produksi minyak dalam negeri yang setiap  tahunnya  menunjukkan  kecenderungan  menurun, mengakibatkan semakin meningkatnya ketergantungan akan impor [1-2]. Penurunan produksi minyak dalam negeri terjadi karena  sudah  tidak  produktifnya  sumur-sumur  tua  yang terdapat  pada  lapangan  tambang  minyak  bumi,  sementara produksi sumur baru masih terbatas [2]. Oleh sebab itu, perlu dilakukan  upaya  untuk  meningkatkan  produksi  minyak  di Indonesia  sendiri  agar  ketergantungan  akan  impor  tidak semakin meningkat.
Upaya yang dapat dilakukan untuk meningkatkan produksi minyak  di  Indonesia  yaitu  dengan  melakukan  eksplorasi sumur-sumur  penghasil  minyak  namun  memerlukan  biaya yang  cukup  besar  dan  waktu  yang  cukup  lama  dalam pelaksanannya [3]. Oleh karena itu, alternatif lain yang dapat dilakukan yaitu reaktivasi sumur-sumur tua yang sudah tidak produktif  [4-5].  Terdapat  banyak  cekungan  sumber  minyak bumi yang dapat dimanfaatkan untuk meningkatkan produksi minyak tersebut, salah satunya terdapat pada Blok Cepu yang dikenal  sudah  menghasilkan  minyak  bumi  sejak  bertahun-
tahun yang lalu [6-8]. Kawasan ini dahulunya dikelola oleh perusahaan besar, namun telah ditinggalkan karena dianggap sudah  tidak  produktif  lagi,  sehingga  saat  ini  masyarakat sekitar secara mandiri mengelola lokasi tambang minyak dan menghasilkan produksi minyak yang cukup optimal [6], [9]. Oleh  sebab  itu,  lokasi  tambang  minyak  Blok  Cepu  ini dianggap potensial untuk dilakukan reaktivasi.
Pelaksanaan  reaktivasi  sumur  tua  dapat  berjalan  optimal dengan  melakukan  kajian  geokimia  organik  melalui  analisa biomarka  untuk  mengetahui  karakteristik  geokimia  organik dari  minyak  mentah  [10-11].  Kerangka  karbon  pada biomarka masih dalam keadaan utuh atau hanya mengalami sedikit  perubahan  setelah  melewati  proses  diagenesis  dan katagenesis sehingga dapat memberikan gambaran mengenai sumber  asal-usul  senyawa  organik  pada  minyak  bumi  [10], [12].  Pada  cekungan  Australia  melaporkan  keberadaan hidrokarbon  alifatik  (seperti n -alkana  dan  seskuiterpenoid) serta  aromatik  (seperti  naftalena,  kadalena,  dan  fenantrena) sebagai indikator sumber senyawa organik pada sedimen [13- 14]. Oleh sebab itu, tulisan ini akan memaparkan hasil kajian geokimia  organik  melalui  analisa  biomarka  sampel  minyak bumi yang  diambil  dari  sumur  tua  Blok  Cepu,  sebagai  data tambahan  dalam  pelaksanaan  reaktivasi  disamping  data geofisika yang telah lazim digunakan.

## II. METODOLOGI PENELITIAN

## A. Ekstraksi Sampel
Sebanyak  50  mL  sampel  dipisahkan  dari  air  yang kemungkinan masih terdapat di dalamnya dengan dikocok di dalam corong pisah hingga terbentuk 2 lapisan. Lapisan atas berupa minyak diambil, sedangkan lapisan bawah berupa air dibuang.  Sampel  minyak  bebas  air  sebanyak  2,0016  gram diambil, ditambahkan n -heksana berlebih dan dibiarkan pada temperatur  kamar  selama  48  jam  (proses  deaspalten)  untuk memisahkan  malten  (filtrat)  dan  bitumen  (endapan)  [15]. Endapan  yang  terbentuk  disaring,  sedangkan  malten  atau ekstrak  organik  total  (EOT)  diambil  untuk  difraksinasi menggunakan kromatografi kolom.

## B. Fraksinasi Sampel
Sebanyak  0,8057  gram  EOT  difraksinasi  menjadi  fraksi hidrokarbon aromatik, alifatik, dan polar secara kromatografi kolom  dengan  silika  gel  GF 254 ukuran  pori  60  mesh  untuk kromatografi  kolom.  Fraksinasi  menggunakan  eluen  secara gradien  pelarut,  dimana  fraksi  hidrokarbon  alifatik  dielusi dengan  pelarut n -heksana,  fraksi  hidrokarbon  aromatik dengan  diklorometana  (DCM)  dan  fraksi  polar  dengan

## Biomarka sebagai Indikator Sumber Asal Usul Senyawa Organik Minyak Mentah Blok Cepu, Formasi Wonocolo, Bojonegoro, Jawa Timur
Aufa Fadhliah, Yulfi Zetra, Agus Wahyudi, dan Perry Burhan Departemen Kimia, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS) e-mail : yzetra@chem.its.ac.id
K
metanol [16-18]. Selanjutnya masing-masing hasil fraksinasi dievaporasi  menggunakan rotary  evaporator vacuum untuk menguapkan pelarutnya [5]. Fraksi hidrokarbon alifatik yang didapatkan dialiri gas nitrogen. Sedangkan fraksi hidrokarbon  aromatik  dilakukan  desulfurisasi  terlebih dahulu.  Desulfurisasi  dilakukan  dengan  melewatkan larutannya pada kolom kecil berisi serbuk Cu [19-20]. Hasil desulfurisasi  kemudian  dialiri  gas  nitrogen.  Selanjutnya fraksi  hidrokarbon  alifatik  dan  aromatik  diidentifikasi menggunakan  instrumen  Kromatografi  Gas-Spektrometer Massa (KG-SM) untuk mengetahui strukturnya.

## C. Identifikasi dengan KG-SM
Instrumen  yang  digunakan  yaitu  KG-SM  Agilent  GCMS D5975C dengan tipe kolom HP-5MS (60 µm x 250 µm x 0,33 µm)  gas  helium  (He)  sebagai  gas  pembawa.  Kondisi operasional  KG-SM  yaitu  suhu  isotermal  70°C  ditahan selama 1 menit, suhu dinaikkan menjadi 100°C dengan laju alir 10°C/menit, kemudian suhu dinaikkan kembali menjadi 180°C  dengan laju kenaikan 1°C/menit, kemudian dinaikkan lagi  hingga  315°C  dengan  laju  kenaikan  5°C/menit.  Suhu akhir isotermal 315°C dipertahankan 7 menit [18]. Data yang diperoleh diproses lebih lanjut dengan Enhanced Chemstation software . Puncak-puncak kromatogram diidentifikasi  berdasarkan  fragmentogram  m/z  spesifik, waktu  retensi  dan  fragmentasi  spektrum  massa.  Data  yang diperoleh  juga  dibandingkan  dengan  hasil  yang  telah dilaporkan oleh peneliti sebelumnya.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
A. Ekstraksi dan Fraksinasi
Ekstraksi terhadap sampel minyak Cepu dengan n -heksana berlebih  didapatkan  ekstrak  organik  total  (EOT)  sebanyak 2,4019  gram  dan  endapan  bitumen  sebanyak  0,1206  gram. Hasil  fraksinasi  terhadap  EOT  menggunakan  metode kromatografi kolom diperoleh 0,695 gram fraksi hidrokarbon alifatik  dan  0,2991  gram  fraksi  hidrokarbon  aromatik.
Masing-masing fraksi yang diperoleh, diidentifikasi menggunakan instrumen KG-SM untuk mengetahui struktur biomarkanya.

## B. Hasil Identifikasi Biomarka
Identifikasi  biomarka  fraksi  hidrokarbon  alifatik  dan aromatik  dilakukan  berdasarkan  fragmentogram  yang spesifik  untuk  masing-masing  senyawa,  fragmentasi molekul,  dan  perbandingan  dengan  spektrum  massa  yang telah  dipublikasikan  pada  beberapa  penelitian  sebelumnya [5],  [10],  [13],  [21-25].  Kelompok  biomarka  fraksi hidrokabon alifatik yang teridentifikasi dalam sampel minyak Cepu  diantaranya n -alkana,  isoprenoid,  seskuiterpana, triterpana  pentasiklik,  dan  sterana.  Sedangkan  kelompok biomarka  fraksi  hidrokabon  aromatik  yang  teridentifikasi diantaranya  derivat  naftalena,  derivat  fenantrena,  derivat bifenil,  derivat  krisena,  senyawa  aromatik  heterosiklik,  dan senyawa aromatik triterpenoid pentasiklik.

## C. Biomarka Sebagai Indikator Sumber Senyawa Organik
Keberadaan  biomarka  dapat  menunjukkan  indikator sumber  senyawa  organik,  sebab  kerangka  karbonnya  yang masih  dalam  keadaan  utuh  atau  hanya  mengalami  sedikit perubahan  setelah  melewati  proses  diagenesis  dan katagenesis [10],[12]. Hasil identifikasi biomarka menunjukkan  bahan  organik  sampel  minyak  Cepu  berasal dari berbagai sumber, yaitu tumbuhan tingkat tinggi, bakteri, dan alga.
Sumber  bahan  organik  dapat  diketahui  melalui  distribusi n -alkana  pada  sampel  minyak  Cepu.  Analisa  biomarka n- alkana  berdasarkan  fragmentogram  m/z  57  menunjukkan adanya  distribusi  bimodal  yang  mengindikasikan  senyawa organik tidak hanya berasal dari satu sumber. Keberadaan n - alkana  rantai  pendek  (<  C 15 )  mengindikasikan  senyawa organik  berasal  dari  alga  dan  plankton  [11],  [23],  [26]. Sedangkan keberadaan n -alkana rantai sedang ( n -C 17 - n -C 24 ) mengindikasikan  adanya  aktivitas  bakteri  pada  lingkungan pengendapan purba minyak Cepu  [11], [27]. Keberadaan n - alkana  rantai  panjang  (C 25 -C 35 )  menunjukkan  senyawa
Gambar 1. Spektrum massa dan struktur 4β(H)-eudesmana.
Gambar 2. Spektrum massa dan struktur 8β(H)-drimana.
fforganik berasal dari tumbuhan tingkat tinggi terestrial [28], [29].
Kelompok  biomarka  seskuiterpana  yang  teridentifikasi berdasarkan  fragmentogram  m/z  123  juga  dapat  menjadi indikator  sumber  senyawa  organik.  Senyawa  4β(H)- eudesmana  dengan  spektrum  massa  seperti  Gambar  1 merupakan turunan dari senyawa β-eudesmol yang terdapat pada  tumbuhan  tingkat  tinggi,  sehingga  keberadaannya mengindikasikan  senyawa  organik  yang  berasal  dari tumbuhan  tingkat  tinggi  [13],  [21],  [25],  [30].  Selain  itu, keberadaan 8β(H)-drimana dan 8β(H)-homodrimana dengan spektrum  massa  seperti  Gambar  2  dan  Gambar  3 menunjukkan adanya input bakteri dalam proses pembentukan senyawa organik [13], [25], [31].
Keberadaan  senyawa  hopanoid  yang  teridentifikasi berdasarkan m/z 191, yaitu 17α(H),21β(H)-hopana; 17β(H),21α(H)-hopana;22S-17α(H),21β(H)-30homohopana; 22R-17α(H),21β(H)-30-homohopana;  22S-17α(H),21β(H)- 30,31-bishomohopana; dan 22R-17α(H),21β(H)-30,31- bishomohopana  dapat  menunjukkan  sumber  asal-usul senyawa  organik.  Kelompok  senyawa  hopanoid  dengan kelimpahan  yang  tertera  pada  Tabel  1  merupakan  turunan dari prekursor bakteriohopanatetrol, sehingga keberadaannya mengindikasikan  indikator  bakteri  sebagai  sumber  senyawa organik minyak [10], [21], [32-33].
Sumber  senyawa  organik  juga  dapat  diketahui  melalui keberadaan kelompok sterana yang diidentifikasi berdasarkan  m/z  217.  Senyawa  trans-trans-trans-bikadinana dengan spektrum massa seperti Gambar 4 merupakan turunan
Gambar 3. Spektrum massa dan struktur 8β(H)-homodrimana.
Gambar 4. Spektrum massa dan struktur trans-trans-trans-bikadinana.
Gambar 5. Spektrum massa dan struktur 1,2,5-TMN.
Gambar 6. Spektrum massa dan struktur 1,2,5,6-TeMN.
dari senyawa polikadinana, sehingga keberadaannya menjadi indikator  senyawa  organik  yang  berasal  dari  tumbuhan tingkat  tinggi  Angiospermae  [11],  [34].  Selain  itu, keberadaan C 27 sterana, yaitu 5α(H)-22-kolestena mengindikasikan  senyawa  organik  bersumber  dari  alga  dan fitoplankton [35-36].
Beberapa biomarka fraksi hidrokarbon aromatik juga dapat menjadi  indikator  sumber  senyawa  organik.  Keberadaan 1,2,5-TMN  dan  1,2,5,6-TeMN  dengan  spektrum  massa seperti  Gambar  5  dan  Gambar  6  mengindikasikan  senyawa organik berasal dari tumbuhan tingkat tinggi terestrial sebab diturunkan  dari  prekursor  β-amirin  yang  keberadaannya berlimpah dalam tumbuhan Angiospermae [26], [37]. Selain itu  keberadaan  1,3,6,7-TeMN  dan  trimetilbifenil  dengan spektrum  massa  seperti  Gambar  7  dan  Gambar  8 mengindikasikan  input  bakteri  sebagai  sumber  senyawa organik minyak Cepu [22], [38].
Keberadaan  senyawa  kadalena  dapat  menjadi  indikator sumber  asal-usul  senyawa  organik  pada  minyak.  Senyawa kadalena  merupakan  turunan  dari  senyawa  kadinana  dan kadinol  yang  terdapat  pada  tumbuhan  terestrial  [33],  [37], [39].  Oleh  sebab  itu,  ditemukannya  kadalena  dengan spektrum massa seperti Gambar 9 pada sampel minyak Cepu mengindikasikan  senyawa  organik  yang  bersumber  dari tumbuhan terestrial.
Keberadaan  senyawa  krisena  pada  sampel  minyak  Cepu dengan spektrum massa seperti Gambar 10 mengindikasikan senyawa  organik  yang  berasal  dari  tumbuhan  tingkat  tinggi serta  terdapat  input  bakteri  dalam  proses  pembentukannya. Hal  tersebut  disebabkan  karena  senyawa  krisena  dihasilkan melalui  reaksi  degradasi  mikrobial  dengan  prekursor  α- amirin  dan  β-amirin  yang  keberadaannya  berlimpah  pada tumbuhan tingkat tinggi terestrial [40].
Input  tumbuhan  tingkat  tinggi  terestrial  sebagai  sumber senyawa  organik  minyak  Cepu  juga  didukung  oleh keberadaan  kelompok  senyawa  poliaromatik  triterpenoid pentasiklik, yaitu 2,2,4a,9-tetrametil-1,2,3,4,4a,5,6,14b- oktahidropisena dengan spektrum massa seperti Gambar  11 dan  1,2,9-trimetil-1,2,3,4-tetrahidropisena  dengan  spektrum massa  seperti  Gambar  12.  Kedua  senyawa  tersebut merupakan  senyawa  yang  spesifik  terdapat  pada  tumbuhan tingkat  tinggi  Angiospermae  sehingga  keberadaannya mengindikasikan  senyawa  organik  yang  bersumber  dari tumbuhan tingkat tinggi [33], [41].
1,2,3,4,4a,5,6,14b-oktahidropisena
Tabel 1. Kelimpahan senyawa hopanoid Waktu Retensi (menit) Nama Senyawa Intensitas (%) 56.52 17α(H),21β(H)-Hopana 58.84 56.80 17β(H),21α(H)-Hopana 100 58.60 22S-17α(H),21β(H)-30- Homohopana 14.69 58.86 22R-17α(H),21β(H)-30- Homohopana 28.21 60.46 22S-17α(H),21β(H)-30,31- Bishomohopana 21.66 60.82
22R-17α(H),21β(H)-30,31- Bishomohopana
15.16
Gambar 7. Spektrum massa dan struktur 1,3,6,7-TeMN.
Gambar 8. Spektrum massa dan struktur trimetilbifenil.
Gambar 9. Spektrum massa dan struktur kadalena.

## IV. KESIMPULAN
Melalui analisa biomarka yang dilakukan pada penelitian ini,  diketahui  senyawa  organik  pada  sampel  minyak  Cepu berasal dari berbagai sumber,  yaitu tumbuhan tingkat tinggi terestrial, bakteri, plankton dan alga. Hal tersebut ditunjukkan dengan adanya distribusi bimodal dalam sebaran homolog n - alkana. Keberadaan biomarka 4β(H)-eudesmana; trans-trans- trans-bikadinana;  1,2,5-TMN;  1,2,5,6-TeMN;  dan  aromatik triterpenoid  pentasiklik  menunjukkan  senyawa  organik berasal dari tumbuhan tingkat tinggi. Sedangkan keberadaan senyawa drimana, hopanoid, dan 1,3,6,7-TeMN mengindikasikan input bakteri pada senyawa organik sampel minyak  Cepu,  serta  keberadaan  5α(H)-22-kolestena  (C 27 sterana) menunjukkan senyawa organik bersumber dari alga dan fitoplankton.
UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  mengucapkan  terima  kasih  kepada  Lembaga Pengabdian  dan  Pengembangan  Masyarakat  (LPPM)  ITS yang  telah  memberikan  bantuan  dana  penelitian  sehingga pelaksanaan  penelitian  berjalan  dengan  baik dan  naskah  ini dapat terselesaikan. Penulis juga mengucapkan terima kasih kepada  penambang  minyak  Blok  Cepu  atas  ketersediannya memberikan  sampel,  serta  tim  Laboratorium  Geokimia Molekuler, Departemen Kimia, FSAD ITS atas fasilitas yang telah diberikan selama pelaksanaan penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]  A.  Sugiyono, “Outlook Energi  Indonesia  2015-2035:  Prospek  Energi Baru Terbarukan,” J Energi Dan Lingkung , vol. 12, pp. 87–96, 2016.
[2]  Suharyati et  al. , Indonesia  Energy  Outlook  2019 ,  1st  ed.  Jakarta: Secretary General of the National Energy Council, 2019.
[3]  A.  Purwatiningsih  and  others,  “Eksplorasi  dan  eksploitasi pertambangan minyak dan gas bumi di Laut Natuna bagian utara Laut Yuridiksi  Nasional  untuk  meningkatkan  kesejahteraan  masyarakat  di Kepulauan Natuna,” Reformasi , vol. 2, no. 2, 2012.
[4]  N.  Soeparyono  and  P.  G.  Lennox,  “Structural  development  of hydrocarbon traps in the Cepu oil fields, northeast Java, Indonesia,” J. Southeast Asian Earth Sci. , vol. 4, no. 4, pp. 281–291, 1990.
[5]  R. Y. P. Burhan, Y. Zetra, P. Pusparatu, and Z. V. Nugraheni, “Upaya reproduksi  sumur  tua  cekungan  Wonocolo  melalui  karakterisasi geokimia organik,” Akta Kim. Indones. , vol. 4, no. 1, pp. 1–14, 2019.
[6]  R. N. Naumi and T. Agus, “Pertambangan minyak tradisional di Desa Wonocolo, Kecamatan Kedewan, Kabupaten Bojonegoro Tahun 1970- 1987,” AVATARA, e-Journal Pendidik. Sej. , vol. 3, no. 1, pp. 135–146, 2015.
[7]  S.  Gunanto,  “Optimalisasi  pengelolaan  sumur  tua  dalam  rangka peningkatan produksi minyak nasional dan kesejahteraan masyarakat,” J. Miner. Energi, dan Lingkung. , vol. 1, no. 2, pp. 16–25, 2017.
[8]  G.  L.  Sari,  Y.  Trihadiningrum,  and  N.  Ni’matuzahroh,  “Petroleum hydrocarbon pollution in soil and surface water by public oil fields in Wonocolo sub-district, Indonesia,” J. Ecol. Eng. , vol. 19, no. 2, 2018.
[9]  E.  Sharaf,  J.  A.  Simo,  A.  R.  Carroll,  and  M.  Shields,  “Stratigraphic evolution of oligocene; miocene carbonates and siliciclastics, East Java
Gambar 10. Spektrum massa dan struktur krisena.
Gambar 11. Spektrum massa dan struktur 2,2,4a,9-tetrametil.
Gambar  12.  Spektrum  massa  dan  struktur  1,2,9-trimetil-1,2,3,4- tetrahidropisena.
basin, Indonesia,” Am. Assoc. Pet. Geol. Bull. , vol. 89, no. 6, pp. 799– 819, 2005.
[10]  S. D. Killops and V. J. Killops, Introduction to Organic Geochemistry , 2nd ed. Oxford: Wiley-Blackwell, 2013.
[11]  K.  E.  Peters,  K.  E.  Peters,  C.  C.  Walters,  and  J.  M.  Moldowan, The Biomarker  Guide ,  2nd  ed.,  vol.  1.  London:  Cambridge  University Press, 2005.
[12]  D.  W.  Waples, Geochemistry  in  Petroleum  Exploration ,  1st  ed. Netherlands: Springer Science \& Business Media, 2013.
[13]  L. Jiang and S. C. George, “Biomarker signatures of Upper Cretaceous Latrobe Group hydrocarbon source rocks, Gippsland Basin, Australia: Distribution  and  palaeoenvironment  significance  of  aliphatic hydrocarbons,” Int. J. Coal Geol. , vol. 196, pp. 29–42, 2018.
[14]  L. Jiang and S. C. George, “Biomarker signatures of Upper Cretaceous Latrobe  Group  petroleum  source  rocks,  Gippsland  Basin,  Australia: Distribution  and  geological  significance  of  aromatic  hydrocarbons,” Org. Geochem. , vol. 138, p. 103905, 2019.
[15]  H.  Alboudwarej,  J.  Beck,  W.  Y.  Svrcek,  H.  W.  Yarranton,  and  K. Akbarzadeh,  “Sensitivity  of  asphaltene  properties  to  separation techniques,” Energy & Fuels , vol. 16, no. 2, pp. 462–469, 2002.
[16]  J. Pryček, M. Ciganek, and Z. Šimek, “Development of an analytical method for polycyclic aromatic hydrocarbons and their derivatives,” J. Chromatogr. A , vol. 1030, no. 1–2, pp. 103–107, 2004.
[17]  T. Al Darouich, F. Behar, C. Largeau, and H. Budzinski, “Separation and  characterisation  of  the  C15-aromatic  fraction  of  Safaniya  crude oil,” Oil Gas Sci. Technol. , vol. 60, no. 4, pp. 681–695, 2005.
[18]  Y. Zetra, J. Kholik, R. Y. P. Burhan, A. Wahyudi, Z. V. Nugraheni, and E.  M.  M.  Putri,  “Organic  geochemistry  characteristic  of  aliphatic hydrocarbon  fraction  of  Sawahlunto  coal,  Ombilin  Basin,  West Sumatra,” in AIP Conference Proceedings , 2018, vol. 2049, no. 1, p. 20018.
[19]  R. Y. P. Burhan, J. M. Trendel, P. Adam, P. Wehrung, P. Albrecht, and A. Nissenbaum, “Fossil bacterial ecosystem at methane seeps: origin of  organic  matter  from  Be’eri  sulfur  deposit,  Israel,” Geochim. Cosmochim. Acta , vol. 66, no. 23, pp. 4085–4101, 2002.
[20]  C.  Huang,  B.  Chen,  J.  Zhang,  Z.  Liu,  and  Y.  Li,  “Desulfurization  of gasoline by extraction with new ionic liquids,” Energy  & Fuels , vol. 18, no. 6, pp. 1862–1864, 2004.
[21]  H.  Amijaya  and  R.  Littke,  “Properties  of  thermally  metamorphosed coal  from  Tanjung  Enim  Area,  South  Sumatra Basin,  Indonesia  with special  reference  to  the  coalification  path  of  macerals,” Int.  J.  Coal Geol. , vol. 66, no. 4, pp. 271–295, 2006.
[22]  M. Asif and T. Fazeelat, “Petroleum geochemistry of the Potwar Basin, Pakistan:  II--Oil  classification  based  on  heterocyclic  and  polycyclic aromatic hydrocarbons,” Appl. geochemistry , vol. 27, no. 8, pp. 1655– 1665, 2012.
[23]  J.  M.  Fabiańska  and  S.  Kurkiewicz,  “Biomarkers,  aromatic hydrocarbons and polar compounds in the Neogene lignites and gangue sediments of the Konin and Turoszów Brown Coal Basins (Poland),” Int. J. Coal Geol. , vol. 107, pp. 24–44, 2013, doi: 10.1016/j.coal.2012.11.008.
[24]  J.  Schwarzbauer,  R.  Littke,  R.  Meier,  and  H.  Strauss, “Stable  carbon isotope ratios of aliphatic biomarkers in Late Palaeozoic coals,” Int. J. coal Geol. , vol. 107, pp. 127–140, 2013.
[25]  L. Ji, C. He, M. Zhang, Y. Wu, and X. Li, “Bicyclic alkanes in source rocks  of the  triassic yanchang  formation  in the  ordos  basin  and  their inconsistency in oil-source correlation,” Mar. Pet. Geol. , vol. 72, pp. 359–373, 2016.
[26]  M.-F.  Romero-Sarmiento,  A.  Riboulleau,  M.  Vecoli,  and  G.  J.-M.
Versteegh,  “Aliphatic  and  aromatic  biomarkers  from  gondwanan sediments  of  late  ordovician  to  early  devonian  age:  An  early terrestrialization approach,” Org.  Geochem. ,  vol.  42,  no.  6,  pp.  605– 617, 2011.
[27]  Y. Zetra, I. B. Sosrowidjojo, and R. Y. P. Burhan, “Paleoenvironment of brown coal from sangatta coal mines, East Borneo, Indonesia,” J. Teknol. , vol. 78, no. 7, 2016.
[28]  K. E. Peters, “Guidelines for evaluating petroleum source rock using programmed pyrolysis,” Am. Assoc. Pet. Geol. Bull. , vol. 70, no. 3, pp. 318–329, 1986.
[29]  M. J. Fabiańska and D. Smółka-Danielowska, “Biomarker compounds in ash from coal combustion in domestic furnaces (Upper Silesia Coal Basin, Poland),” Fuel , vol. 102, pp. 333–344, 2012.
[30]  A. Tewari, S. Dutta, and T. Sarkar, “Biomarker signatures of Permian Gondwana  coals  from  India  and  their  palaeobotanical  significance,” Palaeogeogr.  Palaeoclimatol.  Palaeoecol. ,  vol.  468,  pp.  414–426, 2017.
[31]  R.  Y.  P.  Burhan,  A.  M.  Chairacita,  Y.  Zetra,  and  E.  Mutiara, “Biomarking study of aromatic hydrocarbon fraction crude oil Tarakan, North Kalimantan,” J. Tek. ITS , vol. 8, no. 2, pp. B32--B38, 2019.
[32]  M.-F.  Romero-Sarmiento,  A.  Riboulleau,  M.  Vecoli,  and  G.  J.  M. Versteegh,  “Occurrence of  retene in upper  Silurian--lower  Devonian sediments  from  North  Africa:  Origin  and  implications,” Org. Geochem. , vol. 41, no. 3, pp. 302–306, 2010.
[33]  Y. Zetra, I. B. Sosrowidjojo, and R. Y. P. Burhan, “Aromatic biomarker from brown coal, Sangatta Coalfield, East Borneo of Middle Miocene to Late Miocene age,” J. Teknol. , vol. 78, no. 6, p. 10, 2016.
[34]  B. G. K. Van Aarssen, J. K. C. Hessels, O. A. Abbink, and J. W. De Leeuw, “The occurrence of polycyclic sesqui-, tri-, and oligoterpenoids derived  from  a  resinous  polymeric  cadinene  in  crude  oils  from southeast Asia,” Geochim. Cosmochim. Acta , vol. 56, no. 3, pp. 1231– 1246, 1992.
[35]  S. M. El-Sabagh, A. Y. El-Naggar, M. M. El Nady, M. A. Ebiad, A. M. Rashad, and E. S. Abdullah, “Distribution of triterpanes and steranes biomarkers  as  indication  of  organic  matters  input  and  depositional environments of crude oils of oilfields in Gulf of Suez, Egypt,” Egypt. J. Pet. , vol. 27, no. 4, pp. 969–977, 2018.
[36]  Q. Cheng, M. Zhang, and H. Li, “Anomalous distribution of steranes in deep  lacustrine  facies  low  maturity-maturity  source  rocks  and  oil  of Funing formation in Subei Basin,” J. Pet. Sci. Eng. , vol. 181, p. 106190, 2019.
[37]  B.  G.  K.  van  Aarssen,  R.  Alexander,  and  R.  I.  Kagi,  “Higher  plant biomarkers  reflect  palaeovegetation  changes  during  Jurassic  times,” Geochim. Cosmochim. Acta , vol. 64, no. 8, pp. 1417–1424, 2000.
[38]  R.  Trolio,  K.  Grice,  S.  J.  Fisher,  R.  Alexander,  and  R.  I.  Kagi, “Alkylbiphenyls and alkyldiphenylmethanes as indicators of petroleum biodegradation,” Org. Geochem. , vol. 30, no. 10, pp. 1241–1253, 1999.
[39]  Y.  Hautevelle,  R.  Michels,  F.  Malartre,  and  A.  Trouiller,  “Vascular plant biomarkers as proxies for palaeoflora and palaeoclimatic changes at  the  Dogger/Malm  transition  of  the  Paris  Basin  (France),” Org. Geochem. , vol. 37, no. 5, pp. 610–625, 2006.
[40]  H. Zhang, A. Kallimanis, A. I. Koukkou, and C. Drainas, “Isolation and characterization  of  novel  bacteria  degrading  polycyclic  aromatic hydrocarbons from polluted Greek soils,” Appl. Microbiol. Biotechnol. , vol. 65, no. 1, pp. 124–131, 2004.
[41]  M. R. B. Loureiro and J. N. Cardoso, “Aromatic hydrocarbons in the Paraiba Valley oil shale,” Org. Geochem. , vol. 15, no. 4, pp. 351–359, 1990.