## PENGARUH MONOSODIUM GLUTAMATE (MSG) TERHADAP JUMLAH DAN MORFOLOGI SPERMATOZOA TIKUS JANTAN DEWASA (Rattus norvegicus)

## Nurhayati
Dosen Jurusan Analis Kesehatan Poltekkes Kemenkes Palembang
Abstrak
Monosodium glutamate (MSG) sebagai penyedap makanan telah luas digunakan dimasyarakat. Hasil penelitian pemakaian MSG masih kontroversial antara aman dengan mempunyai sifat toksik. Salah satu sifat toksiknya adalah menurunkan fungsi sistem organ reproduksi. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh pemberian monosodium glutamate terhadap  jumlah dan morfologi spermatozoa pada tikus jantan dewasa ( Rattus norvegicus ). Penelitian ini menggunakan metode pendekatan Rancangan  acak lengkap terhadap tikus jantan dewasa dengan berat 280-300 gr. Sampel terdiri dari 24 ekor tikus yang dibagi 4 kelompok yaitu kelompok kontrol I (Kontrol) perlakuan 2, 3 dan 4. Kelompok 2, 3, 4 diberikan monosodium glutamate dengan dosis masing-masing : 72 mg, 108 mg, 144 mg setiap hari diberikan peroral yang dilarutkan dengan aquabides 1 ml selama 48 hari. Setelah 48 hari perlakuan tikus di korbankan untuk diambil testisnya. Pemeriksaan jumlah dan morfologi spermatozoa menggunakan mikroskop. Kemudian hasilnya dianalisa dengan menggunakan One Way ANOVA dan dilanjutkan dengan uji Multiple  Comparison jenis Bonferroni. Hasil penelitian pemberian monosodium glutamate dengan dosis 72 mg dan dosis 108 mg dapat menurunkan  jumlah dan peningkatan morfologi abnormal secara tidak bermakna.  Dosis 144 mg dapat menurunkan   jumlah dan peningkatan morfologi abnormal spermatozoa secara bermakna. Dapat di simpulkan ada pengaruh pemberian monosodium glutamate terhadap penurunan  jumlah dan peningkatan morfologi abnormal spermatozoa pada tikus  jantan dewasa ( Rattus norvegicus).
Kata Kunci: MSG, jumlah spermatozoa, morfologi spermatozoa Kepustakaan : 13 (1982 – 2012)

## PENDAHULUAN

## A. Latar Belakang
Infertil adalah suatu kondisi dimana pasangan suami  istri  belum  mampu  memiliki  anak walaupun  telah  melakukan  hubungan  seksual secara teratur dalam waktu 1 tahun   tanpa menggunakan alat kontrasepsi jenis apapun. Dari keseluruhan  kasus  infertil,  dinyatakan  5% disebabkan oleh kualitas spermatozoa yang tidak baik dan berkurangnya jumlah spermatozoa. para ahli  memastikan  angka  infertilitas  meningkat mencapai 15%-20% dari sekitar 50 juta pasangan di Indonesia (1)
Tuntutan  kebutuhan  terhadap  makanan  yang rasanya enak membawa konsekuensi pemakaian bahan penyedap semakin meningkat dari waktu ke waktu. Apabila diberikan secara berlebihan, zat tersebut akan terakumulasi  dalam tubuh. Bahan penyedap  yang  sering  digunakan  adalah monosodium glutamate (MSG) yang pertama kali disolasi dalam bentuk kristal dari ganggang laut (Laminaria  japonica) dan  diidentifikasi  sebagai asam glutamat yang dapat meningkatkan rasa lezat pada makanan (2) .
MSG berupa bubuk kristal putih, yang sejak lama digunakan  sebagai  bahan  tambahan  makanan.. MSG berfungsi sebagai penguat dan penyedap rasa bila  ditambahkan  terutama  pada  makanan. Glutamat adalah salah satu  jenis asam amino
penyusun  protein dan merupakan komponen alami dalam setiap makhluk hidup baik dalam bentuk terikat  maupun  bebas.  Semua  makanan  yang mengandung protein seperti daging, ikan, susu dan tanaman banyak mengandung glutamat. Glutamat yang masih  terikat dengan asam amino lain sebagai protein tidak memiliki rasa tetapi dalam bentuk bebas memiliki rasa gurih. Semakin tinggi kandungan glutamat bebas dalam suatu makanan, semakin kuat rasa gurihnya. Glutamat bebas dalam makanan sehari-hari umumnya rendah, sehingga untuk  memperkuat  cita  rasa  perlu  adanya tambahan  bumbu-bumbu yang kaya kandungan glutamat bebas. Glutamat bebas tersebut bereaksi dengan ion natrium membentuk garam. Diketahui komposisi senyawa MSG adalah 78% glutamat,
12% natrium dan 10% air (3) .
Hasil  survei  Yayasan  Lembaga  Konsumen Indonesia  (YLKI)  menemukan  bahwa  para pedagang mie bakso, mie pangsit dan mie  di Jakarta menggunakan MSG sebanyak 1840-3400 mg/mangkok (4) .
Food Additive Organizatian (FAO) dan World Health  Organization  (WHO) mengelompokkan MSG  sebagai food  additive (zat  tambahan makanan)  dengan acceptable daily intake (ADI) sebesar 120 mg/kg berat badan/hari. Nilai ambang keamanan  ini  harus  diperhatikan  oleh  setiap konsumen  MSG agar  tidak melebihi  jumlah konsumsinya (5) .
Pemberian MSG 4 g/kg berat badan pada tikus Wistar secara intraperitoneal 15 hari (paparan jangka pendek) dan  30 hari (paparan  jangka panjang) menimbulkan  penurunan  berat  testis, jumlah  dan  morfologi  normal  spermatozoa. Paparan jangka pendek menunjukkan penurunan jumlah dan morfologi normal spermatozoa lebih rendah (6) . Secara normal otak dilindungi oleh Blood Brain Barrier yang  fungsinya  mencegah  glutamat berlebih  di  otak.  Apabila  terjadi  kelebihan glutamat, glutamat akan dipompakan kembali ke dalam sel-sel glia yang mengelilingi neuron. Bila neuron terpapar glutamat dalam jumlah besar maka sel-sel tersebut akan  mati. Glutamat membuka Ca 2+ channel neuron sehingga Ca 2+ dapat masuk ke dalam sel. Sejumlah reaksi kimia terjadi dalam sel yang seringkali memicu pelepasan bahan-bahan kimia. Bila kadar glutamat berlebih, Ca 2+ channel akan tetap terbuka sehingga reaksi kimia juga akan semakin  meningkat mengawali pengrusakan sel tersebut  dan  sel-sel  yang  memiliki reseptor glutamat. Ada beberapa tempat di otak yang tidak bisa dilindungi oleh Blood Brain Barrier termasuk nucleus arcuatus dan nucleus ventromedial di hipotalamus.  Sebagai  pusat  pengaturan homeostasis,  hipotalamus mengatur  pengeluaran hormon  yang  bekerja  pada  gonad.  Karena  MSG yang berlebihan  dapat menyebabkan  kerusakan nucleus arcuatus dan nucleus ventromedial di hipotalamus sehingga  mengakibatkan penurunan sekresi GnRH ( Gonadotrophin  Releasing Hormone )  sehingga  mempengaruhi  hipofisis anterior  dalam  mensekresi  hormon-hormon gonadotropin  yaitu Follicle Stimulating Hormone (FSH)  dan Luteinizing Hormone (LH)  menjadi turun (7) .
FSH  dan  LH  bekerja  merangsang perkembangan  testis.  FSH  bekerja  untuk mempengaruhi tubulus seminiferus dan sel sertoli. Penurunan  berat  testis  berhubungan  dengan penyusutan  tubulus  seminiferus sebagai tempat utama proses spermatogenesis yang menghasilkan spermatozoa. Sel sertoli berfungsi dalam proses pembentukan ABP ( Androgen Binding Protein ) yang fungsinya sebagai reseptor untuk mengikat testosteron  bebas  dalam  darah  untuk proses spermatogenesis, sedangkan LH ( luteinizing hormone )  bekerja  pada  sel  leydig  untuk menghasilkan  testosteron y ang  berfungsi  untuk proses spermatogenesis (8) .
Pada tikus jantan apabila sekresi hormon- hormon gonodotropin yaitu FSH dan LH menurun akan  mempengaruhi  perkembangan   testis sehingga kemungkinan  akan menurunkan  kadar testosteron  dan  mempengaruhi  proses spermatogenesis.

## METODE PENELITIAN

## Jenis  Penelitian
Jenis penelitian eksperimen dengan   rancangan acak lengkap (RAL),  yaitu rancangan  dengan beberapa perlakuan yang disusun secara random untuk seluruh unit percobaan

## Populasi dan Sampel Penelitian
Populasi dalam penelitian ini menggunakan tikus jantan dewasa Strain Sprague dawley .
Sampel dalam penelitian ini adalah tikus jantan dewasa Strain Sprague Dawley sebanyak  32 ekor yang memenuhi kriteria inklusi

## Prosedur Kerja Persiapan Penelitian
Pemeli haraan terhadap  hewan percobaan.Tikus ditempatkan  dalam kandang yang terbuat yang ditutup dengan kawat kasa. Dasar kandang dilapisi dengan sekam padi setebal 0,5-1 cm dan diganti setiap 3 hari. Cahaya ruangan dikontrol persis 12 jam terang (pukul 06.00 sampai dengan18.00) sedangkan  suhu  dan  kelembaban  ruangan dibiarkan berada di kisaran alamiah. Pakan (pelet komersial) dan minum (air PAM) disuplai tiap hari
a.  Persiapan hewan percobaan
1. Aklitimasi tikus 7 hari sebelum perlakuan
2. Penimbangan berat  tikus, dipilih yang sehat
3. Tikus dikelompokkan sesuai perlakuan
b. Penentuan dosis dan lama perlakuan c. Pengelompokan Hewan Percobaan

## a. Pemeriksaan Jumlah Spermatozoa
Pengamatan jumlah spermatozoa dilakukan dengan Suspensi sperma yang telah  diperoleh terlebih dahulu  di  homogenkan,  selanjutnya  diambil sebanyak 10 µl sampel selanjutnya dimasukkan ke dalam  kotak/bidang  a,  b,  c,  d  dan  e.  Hasil perhitungan  jumlah  spermatozoa  kemudian dimasukkan ke dalam rumus penentuan jumlah sperma/ml  suspensi  sekresi  cauda  epididimis sebagai berikut
Jumlah  sperma  =  N x  10 6 spermatozoa/ml suspensi
Dimana N =  jumlah spermatozoa yang di hitung pada kotak a, b, c, d,dan e.

## b. Pemeriksaan Morfologi Spermatozoa
Untuk  menentukan  morfologi spermatozoa, diambil semen dari cauda epididimis diatas dan dibuat sediaaan hapus pada kaca objek dikeringkan kemudian diberi Alkohol 70% selama 15  menit  dikeringkan  dan  diberi  pewarnaan Giemsa selama  15 menit, Setelah itu dibilas
dengan  air  kran  dan  didinginkan.  Kemudian dengan mikroskop cahaya di hitung dengan jumlah 100  spermatozoa,  ditentukan  persentase spermatozoa yang normal (9) .
Untuk mendapatkan hasil akhirnya, kiri dan kanan cauda dijumlah dan diambil rata- ratanya.  Ciri  spermatozoa  normal  yaitu mempunyai bentuk kepala seperti kait pancing dan ekor  panjang  lurus,  Sedangkan  spermatozoa abnormal  mempunyai  bentuk  kepala  tidak beraturan dapat berbentuk seperti pisang atau tidak beraturan

## HASIL PENELITIAN
A. Karakteristik Sampel
1. Berat badan tikus
Minimal berat badan tikus jantan yang digunakan adalah 280 gram dan maksimal 300 gram. Rata-rata berat badan tikus yang digunakan pada  masing-masing  kelompok  adalah  290,83 gram.
Tabel 1. Hasil uji homogenitas Berat badan tikus.
Perlakuan(mg) Berat badan tikus (gram) rerata SD p value Kel  1(kontrol) Kel 2 (72 mg) Kel 3(108mg) Kel 4 (144 mg) 291,67 9,832 291,67 9,832 290,00 ± 10,954 290,00  10,954 0,491
Lavene test, p 0,05
Dari Tabel 1 di atas didapat hasil uji homogenitas terhadap berat badan tikus  nilai p =0.491 ( 0,05) , yang artinya berat badan tikus pada setiap  kelompok  perlakuan  homogen  sehingga persyaratan penelitian terpenuhi.
2. Umur tikus Minimal umur tikus yang digunakan adalah
3 bulan dan maksimal 4 bulan. Rata-rata umur tikus  yang  digunakan  pada  masing-masing kelompok adalah 3,417 bulan.
Tabel 2 Hasil uji homogenitas terhadap Umur tikus.
Perlakuan Umur tikus (bulan) rer              rata-rata ± SD p value Kel1(kontrol) Kel 2(72 mg) Kel3(108mg) Kel4(144mg) 3,417±0,4916 3,500±0,5477 3,333±4,5164 3,417±0,4916 0,765 Lavene test, 0,05
Dari  Tabel  2  di  atas  didapat     uji homogenitas terhadap umur  tikus   nilai p = 0,765( 0,05 )   yang artinya umur tikus pada setiap  kelompok  perlakuan  homogen  sehingga persyaratan penelitian terpenuhi.

## B. Efek  Monosodium glutamate  (MSG) terhadap Jumlah spermatozoa
Dilakukan  uji  t  berpasangan  untuk  mengetahui perbedaan  rata-rata jumlah spermatozoa sebelum dan sesudah perlakuan setiap kelompok
Tabel  3  Efek  MSG  terhadap  jumlah spermatozoa sebelum dan sesudah perlakuan .
Kel.per- Lakuan Jumlah spermatozoa Sebelum (rerata ± SD) Sesudah (rerata ± SD) p  value Kel 1 Kel 2 Kel 3 Kel4 219,99  ± 0,000 219,99  ± 0,000 219,99  ± 0,000 219,99  ± 0,000 213,83  ±0,5947 208,83  ±0,7737 204,50  ±0,8826 194,83  ±1,0108 0.0870 0,020 0,010 0,002
Dari Tabel 3 di atas didapat hasil ada perbedaan yang bermakna sebelum dan sesudah perlakuan pada kelompok 2, kelompok 3 dan kelompok 4 ( p<0,05 ), sedangkan pada kelompok 1 tidak ada perbedaan yang bermakna ( p>0,05 ). Selanjutkan untuk melihat perbandingan rata-rata jumlah spermatozoa sesudah perlakuan antar kelompok dilakukan uji t tidak berpasangan di dapat hasil sbb:
Tabel  4   Efek  MSG  terhadap  jumlah spermatozoa antar kelompok perlakuan.
Kelompok perlakuan jumlah spermatozoa (juta/ml) Rerata  ±  SD Rerata  ± SD Pvalue Kel 1-2 Kel 1-3 Kel 1-4 Kel 2-3 Kel 2-4 Kel  3-4 213,83 ± 5,947 213,83 ± 5,947 213,83 ± 5,947 208,33 ±  7,737 208,33 ±  7,737 204,50 ±  8,826 208,33 ±  7,737 204,50 ±  8,826 194,83 ±  10,108 204,50 ±  8,826 194,83 ±  10,108 194,83 ±  10,108 0,198 0,057 0,003 0,442 0,027 0,108
Dari Tabel 4 di atas didapatkan hasil bahwa  ada  perbedaan  yang  bermakna  antara kelompok 1 dan 4, kelompok 2 dan 4( p<0,05 ), sedangkan pada kelompok 1 dan 2, kelompok 1 dan 3,kelompok 2 dan 3, kelompok3 dan 4 tidak ada perbedaan yang bermakna, ( p>0,05 ) Dari hasil uji Anova didapatkan nilai p = 0,006 ( p<0,05 ), disimpulkan bahwa ada pengaruh pemberian monosodium glutamate terhadap jumlah  spermatozoaUntuk  melihat  signifikansi antar kelompok perlakuan, maka pengujian dapat dilanjutkan dengan uji Post hoc Bonferroni .
Tabel 5 Hasil Uji Post hoc  Bonferroni jumlah spermatozoa (juta) pada kelompok kontrol dan perlakuan kontrol Kel.2 (72mg) Kel. 3 108mg) Kel 4 (144 mg) Control 1.000 0,393 0,005 Kel 2 1,000 1,000 0,640 Kel 3 0,393 1.000 0,343 Kel 4 0,005 0,064 0,343

## Post Hoc Bonferroni
Dari Tabel 5 di atas didapatkan hasil ada perbedaan  yang bermakna  jumlah  spermatozoa tikus jantan dewasa antara kelompok 1(kontrol) dan 4, ( p < 0,005)

## C.  Efek  Monosodium  glutamate  (MSG) terhadap morfologi spermatozoa
Dilakukan  uji  t  berpasangan  untuk mengetahui   perbedaan   rata-rata  morfologi spermatozoa sebelum dan sesudah perlakuan setiap kelompok
Tabel  6.   Efek MSG  terhadap morfologi spermatozoa sebelum & sesudah perlakuan . Kel Perlakuan Morfologi spermatozoa Sebelum (rerata ± SD) Sesudah (rerata ± SD)    p value Pvalue Kel 1 Kel 2 Kel 3 Kel 4 19  ± 0,000 19  ± 0,000 19   ±0,000 19  ± 0,000 18,60  ±  1,673    0,621 19,50  ± 1,225   0,363 20,83 ± 0,983   0,006 23,33  ±1,505   0,001 0.621 0,363 0,006 0,001 Uji t berpasangan Dari Tabel 6 di atas didapat hasil ada perbedaan yang bermakna sebelum dan sesudah perlakuan pada kelompok 3 dan kelompok 4 ( p<0,05 ), sedangkan pada kelompok 1 dan 2 tidak ada perbedaan yang bermakna ( p>0,05 ).
Selanjutkan untuk melihat perbandingan rata-rata  berat testis  sesudah  perlakuan  antar kelompok  dilakukan  uji  t  tidak  berpasangan didapat hasil sebagai berikut:
Tabel 7.  Efek MSG terhadap morfologi spermatozoa antar kelompok perlakuan.
Kel perlakuan Morfologi spermatozoa ( %) Rerata Rerata Pvalue Kel 1-2 Kel 1-3 Kel 1-4 Kel 2-3 Kel 2-4 Kel 3-4 18,83 ± 1,602 18,83 ± 1,602 18,83 ± 1,602 19,50±  0,983 19,50± 0,983 20,83 ± 0,983 19,50±  0,983 20,83 ±  0,983 23,60  ± 1,517 20,83 ±  0,983 23,60 ±  1,836 23,60 ±  1,836 0,437 0,026 0,000 0,064 0,001 0,007 Uji t tidak berpasangan
Dari Tabel 7. diatas dapat hasil bahwa ada perbedaan yang bermakna antara kelompok 1 dan 3, kelompok 1 dan 4, kelompok 2 dan 4, kelompok 3 dan 4 ( p<0,05 ), sedangkan pada kelompok 1 dan 2, kelompok 2 dan 3 tidak ada perbedaan yang bermakna, ( p>0,05 )
Dari hasil uji Anova didapatkan nilai p = 0,000 ( p<0,05 ),  disimpulkan bahwa ada pengaruh pemberian monosodium glutamate terhadap morfologi spermatozoa.  Untuk melihat signifikansi  antar  kelompok  perlakuan,  maka pengujian dapat dilanjutkan dengan uji Post  hoc Bonferroni .
Tabel 8 . Hasil Uji Post hoc Bonferroni morfologi spermatozoa Tikus Jantan (Spraque dawley) pada kelompok kontrol dan perlakuan
Kel 1 kontrol Kel.2 (72mg) Kel. 3 (108 mg) Kel 4 (144mg) Control 1,000 0,393 0,005 Kel 2 1,000 1,000 0,064 Kel 3 0,393 1.000 0,343 Kel 4 0,005 0,064 0,343

## Post Hoc Bonferroni
Dari Tabel 8. diatas didapat hasil ada  perbedaan yang bermakna morfologi spermatozoa   tikus jantan dewasa  kelompok 1 dan 4 ( p 0,005).

## PEMBAHASAN

## A. Jumlah Spermatozoa
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  terjadi penurunan jumlah spermatozoa setelah dilakukan pemberian Monosodium  Glutamate dengan beberapa tingkat dosis pada tikus jantan dewasa ( Spraque dawley). Setelah dilakukan analisa data dengan uji statistik One Way Anova diperoleh hasil ada  pengaruh  yang  signifikan     pemberian
monosodium glutamate (MSG) terhadap jumlah spermatozoa. Kemudian  dilanjutkan  uji Multiple Comparisons ( Post Hoc test jenis Benferroni ) dimana  hasilnya  terdapat  perbedaan  jumlah spermatozoa  yang  signifikan  (p0,05)  antara kelompok kontrol dengan kelompok  4. Ini berarti penurunan jumlah spermatozoa  pada tikus jantan dewasa ( Spraque dawley ) sebanding dengan besar dosis MSG yang diberikan.
Hasil penelitian ini penelitian ini tidak sejalan dengan penelitian  Suparni (2009) yang mengatakan  bahwa  pemberian  MSG  tidak mempengaruhi jumlah   spermatozoa,  perbedaan hasil dimungkinkan karna subjek yang digunakan berbeda yaitu mencit dan waktu pemberian yang pendek yaitu 15 hari belum mencapai siklus spermatogenesis.  Penelitian  ini  sejalan  dengan penelitian  Nayanatara (2008) yang mengatakan bahwa dengan pemberian MSG 4 gr/ kg bb secara intraperitonial pada tikus wistar jantan dewasa selama 30 hari paparan jangka panjang dapat menurunkan jumlah spermatozoa. P enurunan jumlah spermatozoa  terjadi bila terjadi kerusakan pada sel Leydig oleh ROS sehingga menurunkan kadar testosteron intra testikular yang berakibat terjadi penurunan jumlah spermatozoa (6) .
B.Morfologi Spermatozoa H asil  penelitian  menunjukkan  bahwa terjadi penurunan morfologi spermatozoa setelah dilakukan  pemberian Monosodium  Glutamate dengan beberapa tingkat dosis pada tikus jantan dewasa ( Spraque  dawley). Setelah  dilakukan analisa data dengan uji statistik One Way Anova diperoleh  hasil  ada  pengaruh  yang  signifikan pemberian monosodium glutamate (MSG) terhadap morfologi spermatozoa, dilanjutkan uji Multiple  Comparisons (post  hoc  test  jenis benferoni)  dimana hasilnya  terdapat  perbedaan morfologi spermatozoa yang signifikan (p0,05) antara kelompok 1 (kontrol) dengan kelompok perlakuan (kelompok 4). Ini berarti penurunan kadar hormon testosteron pada tikus jantan dewasa ( Spraque dawley ) sebanding dengan besar dosis MSG yang diberikan. Penelitian ini tidak sejalan dengan penelitian suparni, 2009 yang mengatakan bahwa  pemberian  MSG  tidak  mempengaruhi morfologi  spermatozoa,  perbedaan  hasil dimungkinkan  karna  subjek  yang  digunakan berbeda dan waktu pemberian yang pendek belum mencapai siklus spermatogenesis.
Gangguan spermatogenesis dapat terjadi melalui 3 mekanisme bersifat antifertilitas yaitu ; pretestikuler,  testikuler  dan  post  testikuler. Mekanisme  pretestikuler  menghambat spermatogenesis  melalui  poros  hipotalamus  , hipofisis dan testis. LH yang menurun dalam serum akan mereduksi FSH sehingga produksi sperma  terhambat.  Penelitian  pemberian  MSG
sebanyak 4 mg/g bb pada tikus menyebabkan penurunan kadar hormon testosteron plasma tetapi tidak menimbulkan perubahan morfologi tubulus seminiferus. penelitian yang dilakukan oleh Das dan Ghosh (2010) pemberian MSG sebanyak 2 mg/bb pada tikus baru lahir menunjukkan adanya peningkatan jum lah spermatosit pakiten secara bermakna, sel Leydig lebih besar, dan diameter tubulus  seminiferus  mengecil  dibandingkan kontrol. Pemberian MSG sebanyak 4 mg/bb pada mencit menyebabkan penurunan jumlah sel Leydig tetapi  tidak  menyebabkan  penurunan  jumlah spermatozoa (10) .
Defisiensi  asam  askorbat  telah  lama dihubungkan dengan jumlah  spermatozoa  yang rendah,  peningkatan  jumlah  spermatozoa abnormal, dan penurunan gerak spermatozoa (11) . Testis  sebagai  tempat  berlangsungnya spermatogenesis bersifat sangat rentan  terhadap proses oksidasi oleh radikal bebas Radikal bebas ini  akan  menimbulkan  gangguan  pada spermatogenesis  dan  membran  spermatozoa. Membran  sel  spermatogenik  mengandung sejumlah besar asam lemak tak jenuh rantai ganda. Bila radikal bebas yang terbentuk bertemu dengan asam lemak tak jenuh ganda dalam membran sel, akan terjadi reaksi peroksidasi lipid dari membran sel  tersebut  yang  mengakibatkan  peningkatan fluiditas membran, gangguan integritas membran dan inaktifasi ikatan membran dengan enzim dan reseptor. Hal ini akan menyebabkan peningkatan kerusakan  sel  termasuk  spermatozoa (11) . berkurangnya  ATP  intraseluler  dengan  cepat sehingga  berakibat  kerusakan  aksonema, penurunan viabilitas spermatozoa, meningkatnya kerusakan morfologi serta kehilangan kemampuan kapasitasi dan reaksi akrosom spermatozoa (12) . MSG mengandung natrium sehingga bila dikonsumsi  dalam  dosis berlebih  maka  akan menyebabkan peningkatan natrium itu MSG juga dapat membentuk Reactive oxygen species (ROS), dimana  keduanya  akan  sama-sama  merusak membran  plasma  spermatozoa.  Salah  satu mekanisme  yang  mungkin  berperan  dalam timbulnya ROS akibat pemberian MSG berlebih, disebabkan  karena  terjadi  penurunan  asam askorbat  dimana  asam  askorbat  merupakan antioksidan yang dapat mendonorkan elektronnya sehingga dapat mencegah  zat lain  teroksidasi. Peningkatan kadar ROS akan menghasilkan stress oksidatif akibat  kadar  ROS melampaui batas pertahanan  antioksidan  tubuh  sehingga  akan menyebabkan kerusakan sel, jaringan dan organ. Adanya abnormalitas primer dan sekunder pada spermatozoa, dimana Abnormalitas primer  yang terlihat berupa kepala kecil, kepala amorf dan ekor spiral,  sedangkan  abnormalitas  sekunder  yang terlihat yaitu spermatozoa tanpa kepala dan tanpa ekor.  Hal  ini  disebabkan  karena  ROS
mempengaruhi  membran  plasma  spermatozoa yang mengandung fosfolipid dan asam lemak tak jenuh dalam jumlah besar, dimana asam lemak tak jenuh rentan  terhadap ROS terutama radikal hidroksil yang merupakan turunan paling reaktif, ini  dikarenakan  radikal  hidroksil  akan menimbulkan  reaksi  rantai  yang  disebut peroksidasi lipid sehingga berakibat terputusnya rantai asam lemak menjadi senyawa yang bersifat toksik  terhadap  sel  spermatozoa.  Proses peroksidasi dimulai dengan terbentuknya carbon centered  radical pada  lapisan  fosfolipid  dan selanjutnya bereaksi dengan oksigen membentuk radikal bebas baru yaitu radikal bebas peroksil. Radikal peroksil cukup reaktif untuk menyerang asam lemak di sekitarnya sehingga dapat terbentuk lipid hidroperoksida dan carbon centered radical yang  baru  dan  disebut  radikal  hidroksil. Penimbunan hidroperoksida lipid pada membran akan menyebabkan gangguan pada fungsi sel. (13) . Hal  inilah  sebagai  agen  utama  perubahan morfologi  spermatozoa  dari  normal  menjadi abnormal (6) .

## Daftar Pustaka
1. Kurniawan.  2009. Infertilitas Pasutri (1), http/www ujung dunia,co cc/2009/106/Infertilitas  pasangan  suami istri/html/27 september 2012
2. Linderman   B,  Ogiwara  Y, et al .  2002. The discovery of Umami, Chemical senses. Univercitydes Sarlandes, Medical falculty.
3. Sukawan, Uke. 2008 . Efek toksik Monosodium Glutamat (MSG) pada binatang percobaan. Universitas Indonesia . Jakarta
4. Setiawati.  2008. Gambaran  Kecemasan Pasangan Infertile , Fk USU
5. Elfiana. 2012. Pengaruh MSG terhadap kadar hormon testosteron dan berat testis pada tikus putih jantan .  Jurnal  Biomedik  Universitas Andalas Padang.
6. Nayanatara  A,  Vinodini  N,  Damader  G,  et  al. 2008, Role of Ascorbic acid in Monosodium Glutamate  Mediated  Effect  on  Testicular weigh, Sperm Morphology and Sperm Count , in rat testis, The Journal of Chinese Clinical Medicine
7. Giovan  Battista, franca, S Calandra, et al .
2003, Modullatory Effect of leptin on Leydig Cell Function of Normal and Hiperleptinemia rats , Reproduktif
8. Sherwood. 2002. Fisiologi Manusia dari Sel ke Sistem , Ed. 2, Jakarta, EGC
9. Soehadi, K,  Arsyad. 1982. Analisis Sperma . Fakultas Kedokteran Unair. Surabaya
10. Siregar, J.H. 2009. Pengaruh Pemberian Vit C Terhadap Jumlah Sel Leydig dan Jumlah Sperma Mencit Jantan Dewasa (Mus musculus L) Yang Terpapar Monosodium Glutamat
(MSG) Tesis Pascasarjana. Universitas
Sumatra Utara
11. Suparni. 2009. Pengaruh Pemberian Vitamin C Terhadap  Jumlah  dan  Morfologi  Sperma Mencit  Jantan  Dewasa  Yng  dipaparkan MSG.Tesis  Pascasarjana  UniversitasSumatra Utara
12. Sikka, C.S. 1996. Oxidative Stress and Role of Antioxidants in Normal and Abnormal Sperm Function.  Department  of  Urology,  Tulane University School of Medicine, New Orleans, Louisiana.USA.
13. Murray K, 2003. Biokimia. Alih Bahasa Andry
Hartono, Ed, 25, Jakarta, EGC