Pengaruh  Kombinasi  BAP  ( Benzyl  Amino  Purine )  dan  Kinetin  Terhadap  Multiplikasi Tunas Tanaman Tebu ( Saccharum officinarum L.) Varietas AAS Agribun
Mochamad Alif Ramadhan 1* , Fawzy Muhammad Bayfuqron 1 , Nurcahyo Widyodaru  Saputro 1 , Sri Suhesti 2
1 Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Singaperbangsa Karawang, Jl. HS.Ronggo Waluyo, Karawang, Jawa Barat 41361, Indonesia
2 BSIP Perkebunan, Jalan Tentara Pelajar No. 1 Bogor, Jawa Barat 16111, Indonesia
* Corresponding author, email: alifth9@gmail.com

## ABSTRACT
Sugarcane (Saccharum officinarum L.) is a plantation commodity crop  and raw material for making sugar. The need for sugar increases every year so it is necessary to provide superior sugarcane  seeds  in  large  quantities  in  a  relatively  short  time.  This  can  be  done  by propagating  using  the  plant  tissue  culture  method.  The  research  method  used  was  an experimental  method  using  a  combined  Completely  Randomized  Design  (CRD)  with  4 replications and 8 treatments consisting of: Control (P0); 0.5 ppm BAP + 0 ppm kinetin (P1); 1 ppm BAP + 0 ppm kinetin (P2); 2 ppm BAP + 0 ppm kinetin (P3); 0 ppm BAP + 0.1 ppm kinetin (P4); 0.5 ppm BAP + 0.1 ppm kinetin (P5); 1 ppm BAP + 0.1 ppm kinetin (P6); and 2 ppm BAP + 0.1 ppm kinetin (P7). The data then explained the variations and then continued with the DMRT test at the 5% level. The results showed that treatments P3 and P7 showed the best results at the time of shoot emergence. The P3 treatment also showed the best results in the  number  of  shoot  (8.25)  and  number  of  leaves  (16.50).  The  P7  treatment  showed  the highest shoot yield (4.58).
Keywords: sugarcane, BAP, kinetin, shoot multiplication

## ABSTRAK
Tebu  (Saccharum  officinarum  L.)  merupakan  tanaman  komoditas  perkebunan  yang merupakan bahan baku pembuatan gula. Kebutuhan gula meningkat tiap tahunnya sehingga diperlukan penyediaan bibit tebu unggul dalam jumlah banyak dengan waktu relatif singkat. Hal  tersebut  bisa  dilakukan  dengan  perbanyakan  dengan  menggunakan  metode  kultur jaringan  tanaman.  Metode  penelitian  yang  digunakan  adalah  metode  eksperimental  dengan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) kombinasi dengan 4 ulangan dan 8 perlakuan yang  terdiri  dari:  Kontrol  (P0);  0,5  ppm  BAP  +  0  ppm  kinetin  (P1);  1  ppm  BAP  +  0  ppm kinetin (P2); 2 ppm BAP + 0 ppm kinetin (P3); 0 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin (P4); 0,5 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin (P5); 1 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin (P6); dan 2 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin  (P7).  Data  selanjutnya  dianalisis  ragam  lalu  dilanjut  dengan  uji  DMRT  pada  taraf 5%. Hasil penelitian menunjukan bahwa perlakuan P3 dan P7 menunjukan hasil terbaik bagi waktu  muncul  tunas. Perlakuan P3 juga  menunjukan hasil terbaik pada jumlah tunas (8,25) dan jumlah daun (16,50). Perlakuan P7 menunjukan hasil tinggi tunas terbanyak (4,58).
Kata kunci: tebu, BAP, kinetin, multiplikasi tunas

## PENDAHULUAN
Tanaman  Tebu  ( Saccharum  officinarum L.)  merupakan  tanaman  komoditas perkebunan dari famili Graminae atau rumput-rumputan yang memiliki nilai ekonomis tinggi dan  merupakan  bahan  baku  pembuatan  gula  (Siregar,  2017).  Gula  merupakan  salah  satu komoditas pangan strategis dimana stabilitas harga dari komoditas tersebut berpengaruh besar terhadap  inflasi  (Puspitosari  dan  Surono,  2019).  Produksi  gula  nasional  pada  tahun  2021 yakni sebesar 2,35 juta ton. Sementara itu,  kebutuhan gula tahun 2022 mencapai sekitar 6,48 juta  ton  (Kementerian  Perindustrian,  2022).  Selain  itu,  menurut  data  dari  Badan  Pusat Statistik  (2021),  konsumsi  gula  pasir  perkapita  perminggu  pada  tahun  2021  mencapai  1,123 Kg per kapita per minggu. Konsumsi gula pasir itu lebih tinggi dari rerata tahun sebelumnya yang mencapai 1,105 kg per kapita per minggu.
Perbanyakan  tanaman  dengan  metode  kultur  jaringan  memberi  peluang  besar  untuk menghasilkan  bibit  tanaman  dalam  jumlah  besar  dan  dalam  waktu  yang  relatif  singkat  serta dapat  dilakukan  sepanjang  waktu  dan  tidak  dipengaruhi  oleh  musim  (Hendrayono  dan Wijayani,  1994).  Dengan  sistem  yang  diterapkan  pada  teknik  kultur  jaringan  ini dimungkinkan  untuk  menanam  sepotong  kecil  bagian  tanaman,  lalu  ditumbuh-kembangkan menjadi  kalus,  tunas,  embrio  atau  tanaman  utuh  dengan  laju  regenerasi  yang  relatif  cepat. Sistem  ini  merupakan  alat  penting  dalam  bioteknologi  tanaman  yang  bermanfaat  untuk menunjang kemajuan pertanian (Yusnita, 2015). Teknik kultur jaringan dapat digunakan pada perbanyakan tanaman tebu dalam menghasilkan benih dalam jumlah besar dengan waktu yang relatif  singkat,  pertumbuhan  seragam,  bebas  patogen,  dan  produksi  benih  yang  tidak tergantung musim (Purnamaningsih, 2018).
Keberhasilan  kultur  jaringan  tanaman  dipengaruhi  oleh  beberapa  faktor,  diantaranya sterilisasi,  pemilihan  bahan  eksplan,  faktor  lingkungan  seperti  pH,  cahaya  dan  temperatur, serta kandungan ZPT (Zat Pengatur Tumbuh) dalam medium kultur  (Pangestika et al., 2015). Zat  pengatur  merupakan  faktor  utama  dan.  sangat  sulit  untuk  menerapkan  teknik  kultur jaringan  pada  upaya  perbanyakan  tanaman  tanpa  melibatkan  zat  pengatur  tumbuh. (Zulkarnain,  2009).  Penggunaan  zat  pengatur  tumbuh  dalam  kultur  jaringan  tanaman  sangat penting,  yaitu  untuk  mengontrol  organogenesis  dan  morfogenesis  dalam  pembentukan  dan perkembangan tunas dan akar serta pembentukan kalus  (Lestari, 2011). Zat pengatur tumbuh sitokinin  berperan  dalam  mendorong  pembelahan  sel  atau  jaringan  yang  digunakan  sebagai eksplan dan merangsang perkembangan pucuk-pucuk tunas (Karjadi dan Buchory, 2008).
Penelitian yang dilakukan Praseptiana et al. (2017), pemberian BAP 1 mg/l dan kinetin 1 mg/l induksi tunas cenderung cepat dan pada konsentrasi BAP 0,5 mg/l dan kinetin 0,5 mg/l jumlah tunas dan jumlah daun cenderung lebih banyak. Berdasarkan hal tersebut, tujuan dari penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui  pengaruh  Pengaruh  kombinasi  BAP  (Benzyl  Amino Purine) dan Kinetin terhadap multiplikasi tunas tanaman tebu varietas AAS Agribun.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  ini  dilakukan  di  Laboratorium  Unit  Pengelola  Benih  Unggul  Pertanian, BSIP  Perkebunan  yang  bertempat  di  Jalan  Tentara  Pelajar,  RT  01/  RW  11,  Ciwaringin, Kecamatan  Bogor  Tengah,  Kota  Bogor,  Jawa  Barat  16124.  Waktu  penelitian  dilaksanakan dari  Juli  hingga  September  2023.  Metode  penelitian  yang  digunakan  adalah  metode eksperimental  dengan  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  faktorial  dan  terdiri dari 8 perlakuan yaitu Kontrol (P0); 0,5 ppm BAP + 0 ppm kinetin (P1); 1 ppm BAP + 0 ppm kinetin (P2); 2 ppm BAP + 0 ppm kinetin (P3); 0 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin (P4); 0,5 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin (P5); 1 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin (P6); dan 2 ppm BAP + 0,1 ppm kinetin  (P7)  dengan  4  ulangan  sehingga  terdapat  32  percobaan.  Apabila  hasil  analisis  sidik ragam  menunjukan  adanya  pengaruh  nyata  yang  signifikan  pada  taraf  α  =  5%,  maka  untuk
mengetahui  perlakuan  yang  memberikan  hasil  tertinggi,  data  kemudian  diuji  lanjut  dengan menggunakan uji lanjut Duncan Multiple Range Test (DMRT) pada taraf 5%.
Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  eksplan  dari  tunas  tebu  varietas AAS  Agribun,  larutan  stok  MS0,  larutan  stok  kinetin,  larutan  stok  BAP,  gula,  agar  swallow dan  aquades.  Sedangkan  alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah Autoclave ,  oven, timbangan, magnetic stirrer , pH meter, peristaltic pump , labu erlenmeyer, labu akar, Laminar Air Flow (LAF), botol kultur, pinset, scalpel, bunsen, petri disk, kertas steril dan plastic wrap .

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil uji  lanjut rata-rata waktu muncul tunas  menggunakan uji DMRT pada taraf 5% pada tabel menunjukan perlakuan P3 (BAP 2 ppm + Kinetin 0 ppm ) dan P7 (BAP 2 ppm + Kinetin 0,1 ppm) memberikan hasil rata-rata waktu muncul tunas tercepat yaitu 12,75 hsi.
Tabel 1. Waktu muncul tunas
Kode Perlakuan Waktu muncul tunas (hsi) P 0 BAP 0 ppm + Kinetin 0 ppm 17,75 c P 1 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0 ppm 14,00 b P 2 BAP 1 ppm + Kinetin 0 ppm 13,75 b P 3 BAP 2 ppm + Kinetin 0 ppm 12,75 a P 4 BAP 0 ppm + Kinetin 0,1 ppm 17,25 c P 5 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0,1 ppm 14,00 b P 6 BAP 1 ppm + Kinetin 0,1 ppm 13,50 b P 7 BAP 2 ppm + Kinetin 0,1 ppm 12,75 a KK (%) 3,07
Sejalan  dengan  penelitian  Tilaar  dan  Tulung  (2013),  bahwa  BAP  2  ppm  mampu mempercepat  waktu  bertunas.  Hal  ini  disebabkan  oleh  pemberian  BAP  dan  kinetin  yang merupakan  ZPT  sitokinin  yang  berfungsi  untuk  mendorong  pertumbuhan  tunas,  semakin tinggi  pemberian  konsentrasi  BAP  maka  memacu  pertumbuhan  tunas  lebih  cepat  tetapi apabila  pemberian  BAP  terlalu  tinggi,  diduga  menyebabkan  waktu  muncul  tunas  semakin lama.
Hal  tersebut  sejalan  dengan  penelitian  Ali  et  al.  (2008),  induksi  tunas  tebu  terjadi karena  proses  pembelahan  sel  dan  hormon  sitokinin  sendiri  berperan  penting  dalam pembelahan  sel  dan  diferensiasi  sel.  Diferensiasi  sel  terjadi  jika  sel  sudah  mencapai  volume maksimal, kemudian sel akan terspesialisasi dalam bentuk dan fungsi tertentu. Menurut Elma et  al.  (2017),  kemampuan  eksplan  bertunas  dipengaruhi  oleh  beberapa  faktor  salah  satunya genotip  tanaman,  dalam  meningkatkan  multiplikasi  tunas  (proliferasi)  juga  dipengaruhi  oleh jenis sitokinin dan konsentrasi yang digunakan.
Perlakuan  kontrol  P0  (BAP  0  ppm  +  Kinetin  0  ppm)  merupakan  perlakuan  yang menghasilkan  waktu  muncul  tunas  lebih  lambat  dibanding  dengan  perlakuan  lain  dengan kecepatan  tumbuh  17,75  hsi  dan  tidak  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  P4  (BAP  0  ppm  + Kinetin  0  ppm).  Kondisi  ini  mungkin  disebabkan  karena  tidak  adanya  asupan  zat  pengatur tumbuh  eksogen  yang  memacu  multiplikasi  tunas  di  dalam  media  tumbuh,  sehingga  belum mampu  untuk  pembentangan  dan  diferensiasi  sel  pada  eksplan.  Hal  tersebut  sesuai  dengan pernyataan  Lestari  (2011),  penambahan  zat  pengatur  tumbuh  ke  dalam  media  kultur  dapat meningkatkan konsentrasi zat pengatur tumbuh endogen di dalam sel sehingga menjadi faktor pemicu dalam proses tumbuh dan perkembangan jaringan.
Tabel 2. Jumlah tunas Kode Perlakuan Jumlah Tunas P 0 BAP 0 ppm + Kinetin 0 ppm 2,00 e
P 1 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0 ppm 2,25 de P 2 BAP 1 ppm + Kinetin 0 ppm 4,00 c P 3 BAP 2 ppm + Kinetin 0 ppm 8,25 a P 4 BAP 0 ppm + Kinetin 0,1 ppm 2,00 e P 5 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0,1 ppm 2,75 d P 6 BAP 1 ppm + Kinetin 0,1 ppm 4,50 c P 7 BAP 2 ppm + Kinetin 0,1 ppm 5,75 b KK (%) 10,37
Hasil  uji  lanjut  jumlah  tunas  menggunakan  uji  DMRT  pada  taraf  5%  pada  tabel menunjukan  perlakuan  P3  (BAP  2  ppm  +  Kinetin  0  ppm)  menunjukan  hasil  rata-rata  tunas terbanyak  yakni  sebanyak  8,25  tunas.  Serta  perlakuan  kontrol  P0  (BAP  0  ppm  +  Kinetin  0 ppm)  memberikan  hasil  rata-rata  tunas  terendah,  tidak  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  P4 (BAP 0 ppm + Kinetin 0,1 ppm) dan P1 (BAP 0,5 ppm + Kinetin 0 ppm).
Pertumbuhan  tunas  yang  terjadi  disebabkan  adanya  kesetimbangan  antara  hormon endogen  eksplan  dengan  penambahan  zat  pengatur  tumbuh  eksogen.  Didukung  oleh pernyataan  Ali  et  al.  (2008),  induksi  tunas  tebu  terjadi  karena  proses  diferensiasi  dan pembelahan  sel  yang  dipengaruhi  oleh  keseimbangan  dan  interaksi  antara  homon  endogen dengan  hormon  eksogen.  Selain  itu,  pertumbuhan  tunas  juga  dipengaruhi  oleh  kemampuan eksplan dalam menyerap unsur hara yang terdapat pada media. Yusrianti (2002) menerangkan bahwa  setiap  perlakuan  memiliki  perbedaan  jumlah  tunas  dan  diduga  karena  adanya perbedaan dalam penyerapan nutrisi yang diberikan pada media.
Zat  pengatur  tumbuh  jenis  sitokinin  berperan  penting  dalam  perkembangan  jumlah tunas.  Menurut  George  et  al.,  (2008),  aplikasi  pemberian  sitokinin  tunggal  mampu menghasilkan  tunas  yang  maksimal,  namun  pada  konsentrasi  tertentu  akan  menghasilkan kelainan  pada  tunas  yang  diperoleh.  Hal  tersebut  juga  diudukung  oleh  Purbaningsih  (2001), media  yang  hanya  mengandung  sitokinin  saja  sudah  dapat  mendukung  pertumbuhan  tunas. George  dan  Sherrington  (1984)  jaringan  yang  disubkulturkan  pada  medium  dengan kandungan sitokinin yang memadai akan menghasilkan pembelahan sel secara singkron.
Perlakuan  P3  (BAP  2  ppm  +  Kinetin  0  ppm)  yang  menghasilkan  jumlah  tunas terbanyak sejalan dengan penelitian Luthfiani et al., (2022) yang menerangkan penambahan 2 ppm  BAP  pada  media  MS  menghasilkan  jumlah  tunas  tebu  terbanyak  pada  varietas  AMS sebanyak  11,60  tunas  serta  penelitian  Dewi  dan  Hartati  (2014),  penggunaan  ZPT  BAP  2,0 mg/l  merupakan  media  yang  efektif  pada  multiplikasi  tunas  kopi  Arabika.  Sedangkan perlakuan  kontrol  P0  yang  menghasilkan  tunas  terendah  diduga  karena  kandungan  zat pengatur tumbuh tidak cukup tersedia untuk pertumbuhan tunas tanaman tebu.
Tabel 3. Tinggi tunas Kode Perlakuan Tinggi tunas (cm) P 0 BAP 0 ppm + Kinetin 0 ppm 0,88 e P 1 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0 ppm 1,33 de P 2 BAP 1 ppm + Kinetin 0 ppm 1,63 d P 3 BAP 2 ppm + Kinetin 0 ppm 3,93 b P 4 BAP 0 ppm + Kinetin 0,1 ppm 1,08 de P 5 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0,1 ppm 1,63 d P 6 BAP 1 ppm + Kinetin 0,1 ppm 2,85 c P 7 BAP 2 ppm + Kinetin 0,1 ppm 4,58 a KK (%) 12,21
Hasil  uji  lanjut  tinggi  tunas  menggunakan  uji  DMRT  pada  taraf  5%  pada  tabel menunjukan perlakuan P7 (BAP 2 ppm + Kinetin 0,1 ppm) menunjukan hasil rata-rata tinggi tunas  tertinggi  yakni  4,58cm.  Serta  perlakuan  kontrol  P0  (BAP  0  ppm  +  Kinetin  0  ppm)
memberikan  hasil  rata-rata tinggi  tunas  terendah  yaitu  0,88  cm,  tidak  berbeda  nyata  dengan perlakuan P4 (BAP 0 ppm + Kinetin 0,1 ppm).
Penambahan tinggi tunas sangat dipengaruhi oleh keseimbangan antara hormon dalam eksplan.  Menurut  Salisbury  dan  Ross  (1995),  sitokinin  dapat  meningkatkan  tinggi  tanaman dengan  cara  mendorong  pemanjangan  sel  karena  sitokinin  terbukti  meningkatkan  laju pemanjangan sel. Akan tetapi, pada penelitian  ini tinggi tunas  yang dihasilkan  masih kurang disbanding  dengan  penelitian  sebelumnya  yang  menggunakan  zat  pengatur  tumbuh  jenis auksin. Pada penelitian Islamiati (2022), penambahan IBA 1 mg/L memberikan hasil rata-rata tinggi  tunas  tertinggi.    Hal  tersebut  didukung  oleh  pernyataan  Budi  (2020)  bahwa  hormon auksin  berfungsi  dalam  pemanjangan  sel  dengan  cara  mempengaruhi  dinding  sel.  Selain  itu, batang yang sudah memanjang tidak memerlukan hormn sitokinin eksogen karena kandungan sitokinin endogen dalam jaringan sudah cukup untuk pemanjangan batang (Marlin, 2005).
Berdasarkan  hasil  penelitian,  perlakuan  P7  (BAP  2  ppm  +  Kinetin  0,1  ppm)  yang memberikan hasil rata-rata tunas tertinggi tidak menghasilkan jumlah tunas terbanyak. Hal ini diduga  karena  energy  yang  dibutuhkan  untuk  perbanyakan  tunas  digunakan  untuk pemanjangan  tunas  yang  mengakibatkan  tunas  yang  tinggi  dengan  jumlah  tunas  yang  relatif lebih sedikit. Hal ini didukung oleh pernyataan Handayani (2000), jika tunas yang dihasilkan lebih  banyak,  maka akan terjadi persaingan antar tunas dalam  mendapatkan  nutrisi sehingga dapat  menganggu  pertumbuhan  tunas  yang  menyebabkan  pertumbuhan  tunas  berjalan  lebih lambat.
Pada perlakuan kontrol P0 (BAP 0 ppm + Kinetin 0 ppm) yang menunjukan hasil rata- rata tinggi tunas terendah, hal ini mungkin disebabkan karena tidak terdapat penambahan zat pengatur  tumbuh  sehingga  diduga  hormon  endogen  yang  terkandung  pada  eksplan  tidak cukup  untuk  memacu  pertambahan  panjang  tunas. Sejalan  dengan  penelitian  Islamiati  et  al., (2022)  yang  menunjukan  perlakuan  tanpa  penambahan  zat  pengatur  tumbuh  eksogen memberikan hasil rata-rata tinggi tunas terendah.
Tabel 4. Jumlah daun Kode Perlakuan Jumlah daun P 0 BAP 0 ppm + Kinetin 0 ppm 0,50 e P 1 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0 ppm 2,50 d P 2 BAP 1 ppm + Kinetin 0 ppm 9,75 c P 3 BAP 2 ppm + Kinetin 0 ppm 16,50 a P 4 BAP 0 ppm + Kinetin 0,1 ppm 0.00 e P 5 BAP 0,5 ppm + Kinetin 0,1 ppm 2,75 d P 6 BAP 1 ppm + Kinetin 0,1 ppm 10,00 c P 7 BAP 2 ppm + Kinetin 0,1 ppm 14,00 b KK (%) 8,49
Hasil  uji  lanjut  jumlah  tunas  menggunakan  uji  DMRT  pada  taraf  5%  pada  tabel menunjukan perlakuan P3 (BAP 2 ppm + Kinetin 0 ppm)  menunjukan hasil rata-rata jumlah daun terbanyak yakni sebanyak 16,50 helai. Sedangkan perlakuan P4 (BAP 0 ppm + Kinetin 0,1  ppm)  memberikan  hasil  rata-rata  jumlah  daun  terendah  dengan  tidak  menghasilkan satupun  daun,  tidak  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  kontrol  P0  (BAP  0  ppm  +  Kinetin  0 ppm).
Menurut Pierick (1982), hormon sitokinin berperan dalam meningkatkan aktivitas sel- sel  penyusun  jaringan  meristem  dan  merangsang  sintesis  protein.  Sel  yang  aktif  membelah tersebut mudah  mengalami diferensiasi sel  membentuk fungsi  yang  lebih  spesifik  yang akan berkembang  membentuk  jaringan  penyusun  tunas  dan  daun  tumbuhan.  Hal  tersebut  sejalan dengan penelitian Luthfiani et al. (2022), penambahan BAP 2 ppm memberikan hasil jumlah daun tertinggi yaitu 8,20 helai. Diperkuat dengan penelitian Praseptiyana (2017), penambahan BAP 2 mg/l + Kinetin 0,5 mg/l memberikan hasil jumlah daun terbanyak yaitu 3,51.
Jumlah  daun  dipengaruhi  oleh  jumlah  tunas  yang  muncul,  sehingga  semakin  banyak tunas yang muncul, maka jumlah daun yang terbentuk akan semakin banyak dan sebaliknya. Hal  tersebut  sesuai  dengan  penelitian  Luthfiani  et  al.  (2022)  bahwa  perlakuan  yang menghasilkan  jumlah  tunas  terbanyak  juga  menghasilkan  jumlah  daun  yang  tinggi.  Hal tersebut diperkuat dengan pernyataan Harahap et al. (2014) bahwa pertumbuhan tunas selalu diikuti dengan petumbuhan daun dan Budiman (2021), pertambahan jumlah daun dan jumlah tunas  pada  tanaman  sebanding  dan  menandakan  bahwa  tanaman  tersebut  memiliki pertumbuhan dan perkembangan yang baik.

## KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang  dilakukan,  maka  dapat  diambil  kesimpulan. Terdapat  pengaruh  nyata  pemberian  kombinasi  BAP  ( Benzyl  Amino  Purine )  dan  kinetin terhadap  multiplikasi  tunas  Tanaman  Tebu  ( Saccharum  officinarum L.)  varietas  AAS Agribun. Perlakuan P3 dan P7 memberikan hasil tercepat terhadap waktu muncul tunas yaitu 11,75  his.  Perlakuan  P3  juga  memberikan  rata-rata  hasil  jumlah  tunas  terbanyak  yaitu  8,25 tunas dan rata-rata jumlah daun terbanyak  yaitu 16,50 helai. Perlakuan P7 memberikan rata- rata hasil tinggi tunas tertinggi yaitu 4,58 cm.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Alhamdulillah,  terima  kasih  sebesar-besarnya  kepada  orang  tua  saya  yang  telah memberikan  banyak  dukungan  sehingga  penulis  dapat  menyelesaikan  peneliian  ini,  dan terima kasih sebesar-besarnya pada Ibu Sri Suhesti beserta para teknisi  di Laboratorium Unit Pengelola  Benih  Unggul  Pertanian,  BSIP  Perkebunan  yang  telah  memfasilitasi  serta  banyak membantu  penulis  selama  kegiatan  penelitian  berlangsung.  Terimakasih  pada  Bapak  Fawzy Muhammad  Bayfuron  dan  Bapak  Nurcahyo  Widyodaru  Saputro  atas  bimbingan  serta  saran dalam Menyusun penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Ali,  S.,  Hasan,  S.W.,  Razl,  Shah,  S.,  &  Amir,  R.  (2004).  Micropropagation  of  sugarcane through bud culture. Sarhad Journal Agriculture , 20: 79-82.
Badan Pusat Statistik (2021). Staalitistik tebu Indonesia 2021. Tersedia di https://www.bps.go.id/publication/2022/11/30/6392bf8e4265949485d85e72/statistik- tebu-indonesia-2021.html [Accessed 23 Januari 2023].
Budi, R.S. (2020). Uji komposisi zat pengatur tumbuh terhadap pertumbuhan eksplan pisang barangan  ( Musa  paradisiaca L.)  Pada  media  ms  secara  in  vitro. Jurnal  UISU ,  3(1): 101-111.
Budiman,  F.Y.,  (2021).  Efektifitas  Indole-3-Butryc  Acid  (IBA)  terhadap  pertumbuhan  akar mutan  alfafa  ( Medicago  sativa L.)  Tahan  asam  pH  3.6  pada  kultur  in  vitro. Skripsi. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor . Handayani,  T.  (2000).  Perbanyakan  tanaman  kantong  semar  ( Nepenthes spp.)  dengan  stek batang. Prosiding Seminar Hari Cinta Puspa dan Satwa Nasional , 171-175. Isda, M.N & S. Fatonah.  (2014). Induksi akar pada eksplan tunas anggrek grammatophylum scirptum  var. Citrinum secara  in  vitro pada media  ms dengan penambahan NAA dan BAP. Al – kauniyah Jurnal Biologi . 7 (2).
Istiqomah,  A.M.,  Nintya,S.,  &  Yulita,  N.  (2020).  Pengaruh    media    ms    dan    vw    terhadap pertumbuhan  planlet  anggrek  bulan  (Phalaenopsis  amabilisL.    Blume)  setelah transplanting. Seminar Nasional Pendidikan Biologu dan Saintek . Islamiati,  N.,  Purnomo,  S.S.,  Rahmi,  H.,  &  Suhesti,  S.,  Induksi  tunas  tanaman  tebu ( Saccharum  officinarum L.)  Varietas  CMG  agribun  dengan  pemberian  berbagai
konsentrasi indole  butryc  acid (IBA)  dan benzyl  amino  purine (BAP). Jurnal  Ilmiah Wahana Pendidikan , 8(1): 189-200.
Karjadi,  A.K.  &  Buchory,  A.  (2008).  Pengaruh  auksin  dan  sitokinin  terhadap  pertumbuhan dan  perkembangan  jaringan  meristem  kentang  kultivar  granola. Jurnal  Hortikultura , 18(4): 380–384.
Kementerian  Perindustrian.  (2022).  Tekan  gap  kebutuhan  gula  konsumsi,  kemenperin: produksi  terus  digenjot.  Tersedia  di  https://kemenperin.go.id/artikel/23444/Tekan- Gap-Kebutuhan-Gula-Konsumsi,-Kemenperin:-Produksi-Terus-Digenjot- [Accessed 23 Januari 2022].
Kementerian  Pertanian.  (2018).  Laporan  kinerja  pusat  penelitian  dan  pengembangan perkebunan.
Tersedia
di http://sakip.pertanian.go.id/admin/data2/Lakin%202017%20P-BUN.pdf
Lestari, E.G. (2011). Peranan zat pengatur tumbuh dalam perbanyakan tanaman melalui kultur jaringan. Jurnal AgroBiogen , 7(1): 63–68.
Lutfiani,  I.,  Lestari,  A.,  Saputro,  N.W.  &  Suhesti,  S.  (2022).  Pengaruh  pemberian  berbagai konsentrasi  NAA  (Naphthalene  Acetic  Acid)  dan  BAP  (Benzyl  Amino  Purine) terhadap multiplikasi tunas tanaman tebu (Saccharum officinarum L.). Jurnal Agrotek Indonesia , 1(7): 49–57.
Lidyawati,  N.  N.,  Waeniati,  Muslimin,  &  I.N.  Suwastika.  (2012).  Perbanyakan  tanaman melon (Cucumis melo L.) secara in vitro pada medium ms dengan penambahan indole acetic acid (IAA) dan benzil amino purin (BAP). Journal Natural Science , 1(1): 43-52
Maharia, D. & W. Setiawan. (2011). Inisiasi tunas jabon (A. cadamba (Roxb.) secara in vitro.
Fakultas Pertanian. Universitas Tompotika Luwuk.
www.untika.acid/index.php/profil/23-artikel.
Marlin.  (2005).  Regenerasi  in  vitro  planlet  jahe  bebas  penyakit  layu  bakteri  pada  beberapa taraf konsentrasi 6-benzyl amino purine (BAP) dan 1-naphthalene acetic acid (NAA). Jurnal Ilmu-Ilmu Pertannian Indonesia , 7(1): 8-14.
Miryam, A, I. Suliansyah,  & A. Djamaran.  (2008). Multiplikasi  jeruk kacang (Citrus nobilis L.)  pada  beberapa  konsentrasi  NAA  dan  BAP  pada  media  WPM  secara  in  vitro. Jerami .1(2): 1-8.
Pangestika, D., Samanhudi & Triharyanto, E. (2015). Kajian pemberian iaa dan paclobutrazol terhadap  pertumbuhan  eksplan  bawang  putih. Jurnal  Kewirausahaan  Bisnis ,  16(9): 34–47.
Praseptiana,  C.,  Darmanti,  S.,  Prihastani,  E.  (2017).  Multiplikasi  tunas  tebu  ( Saccharumo officinarum L Var. Bululawang ) dengan perlakuan konsentrasi BAP dan kinetin secara in vitro. Jurnal Buletin dan Anatomi Fisiologi . 2(2) : 153-160.
Purba,  F.  &  Waluyo.  (2016).  Agribisnis  tanaman  perkebunan  semusim  budidaya  tanaman tebu. Jakarta: Kementerian Pertanian.
Purnamaningsih, R. (2018). Penyediakan benih tebu klonal menggunakan teknik kultur. Balai Besar  Penelitian  dan  Pengembangan  Bioteknologi  dan  Sumber  Daya  Genetik Pertanian , 189–208.
Puspitosari, R.R. & Surono, S. (2019). Analisis faktor – faktor yang mempengaruhi konsumsi dan produksi gula menuju swasembada gula 2019. Jurnal Kebijakan Ekonomi , 14(2): 1–15.
Silalahi, M. (2015). Bahan Ajar Kultur Jaringan . Jakarta.
Sukmadajaja, D., & Mulyana, A. (2011). Regenerasi dan pertumbuhan beberapa varietas tebu ( Saccharum officinarum L.) secara in vitro. Jurnal AgroBiogen , 7(2): 106-118. Tilaar, W., & Tulung, S. (2013). Induksi kalus dan tunas dari eksplan pucuk brokoli ( Brassica oleracea L. sub var. italica Planch) pada medium MS yang diberikan NAA Dan BAP. Eugenia , 19(1) : 57-65.
Wattimena. (1992). Bioteknologi tanaman. Bogor: Institut Pertanian Bogor.
Yusnita.  (2015).  Kultur  jaringan  tanaman  sebagai  teknik  penting  bioteknologi  untuk
menunjang pembangunan pertanian. Badar Lampung: Aura Publishing.
Yusrianti,  H.  (2002).  Pengaruh  sumber  eksplan  dan  konsentrasi  zat  pengatur  tumbuh  pada perkembangan ulin ( Eusideroxylon zwageri T.) dengan sistem kultur jaringan. Skripsi. Fakultas Kehutanan Untan . Pontianak.
Zulkarnain. (2009). Kultur Jaringan Tanaman. Jakarta: Bumi Aksara .