KEJADIAN KELAINAN VERTEBRA IKAN NILA ( Oreochromis niloticus ) PADA MEDIA PENETASAN SALINITAS YANG BERBEDA
VERTEBRAE MALFORMATION TILAPIA FISH ( Oreochromis niloticus ) ON DIFFERENT MEDIA HATCHING SALINE
Lailatul Lutfiyah 1 , Rr Juni Triastuti 2 , Endang Dewi Masithah 3 dan Win Darmanto 4
1,2,3 Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Kampus C Mulyorejo - Surabaya, 60115 Telp. 031-5911451
4 Fakultas Sains dan Teknologi Universitas Airlangga Kampus C Mulyorejo - Surabaya, 60115 Telp. 031-5936501, 5936502

## Abstract
Tilapia  fish  belonged  to  the  euryhaline  fish,  which  has  wide  range  tolerance  in  salinity (freshwater euryhaline fish has salinity tolerance >8 ppt). Incidence of fish skeletal abnormalities could be the response of the environment influence such as salinity, temperature and hypoxia. This research uses five  treatments  :  0,5  10,  15,  20  ppt.  The  results  showed  that  the  highest  abnormalities  found  on  the treatment  of  15  ppt  and  20  ppt,  while  the  lowest  for  the  treatment  of  abnormalities  of  10  ppt.  The  best result to be used in the brackish nila aquaculture is 10-15 ppt in salinity.
Keywords : Tilapia, euryhaline, abnormalities
Pendahuluan Ikan nila ( Oreochromis niloticus ) merupakan salah satu ikan tawar yang memiliki nilai  ekonomis  tinggi.  Selain  itu,  ikan  nila termasuk ikan yang memiliki toleransi yang luas terhadap  salinitas  (Ath-thar  dan  Gustiano, 2010) [1] .  Nugon  (2003) [2] menambahkan  bahwa ikan  nila  termasuk  golongan  ikan  eurihalin, yaitu  ikan  yang  mempunyai  kisaran  toleransi yang luas terhadap salinitas. Hal ini dikarenakan perkembangan  sel  chloride  yang  berada  di gill fillament akan  mengalami  peningkatan  pada bagian Na + /K + ATPase dalam darah ketika ikan sudah memasuki air yang bersalinitas. Watanabe et al .,(2008) [3] menegaskan bahwa sel chloride  peranannya  sangat  penting  dalam adaptasi ikan air tawar dan air laut.
Terjadinya  perpindahan  lingkungan  ikan nila  yang  asalnya  dari  ikan  tawar  kemudian dipindah  ke  air  payau,  dapat  berakibat  buruk pada  sel-sel  penyusun  vertebra  ikan  nila. Poernomo,  dkk  (2005) [4] menambahkan  bahwa pembentukan tulang belakang dimulai pada fase gastrulasi  yang  terjadi  pada  proses  mesoderm. Kejadian kelainan pada skeletal ikan merupakan respon  dari  lingkungan  yang  dapat  berupa salinitas,  temperatur  dan  hypoxia  (Middaugh et al ., 1990) [5] . Bunn et a., (2000) [6] menambahkan bahwa telur ikan teleostei pada fase blastula dan gatrula  merupakan  fase  yang  rentan  terhadap perubahan  suhu,  salinitas  dan  kandungan oksigen  dalam  perairan.  Keberadaan  pori  pada
korion  telur  ikan  tergantung  jenis  ikan,  pori pada zebra fish dan pike ditemukan pada lapisan ZRI  tetapi  pada  annual  fish  dan  medaka  tidak ditemukan pori pada korion telurnya (Morrison, 2003) [7] .  Henn  (2011) [8] menegaskan  bahwa permukaan  internal  korion  yang  mengandung banyak  pori  dapat  menjadi  rute  transfer  masuk dan  kelurnya  air  dari  embrio  seluruh  korion. Sehingga  perlu  dilakukan  penelitian  mengenai perkembangan vertebra ikan nila yang ditetaskan  pada  media  penetasan  salinitas  yang berbeda.

## Materi dan Metode
Penelitian  dilakukan  di  Laboratorium Pendidikan  Fakultas  Perikanan  dan  Kelautan, Universitas  Surabaya.  Bahan  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  meliputi  induk  jantan  dan betina  ikan  nila,  telur,  larva  dan  juvenil  ikan nila; air bersalinitas 5 ppt, 10 ppt, 15 ppt dan 20 ppt;  air  tawar;  NaCl  fisiologis;  aquades;.  Alat yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  meliputi rak penetasan telur; akuarium kaca
(50x30x30cm 3 ),  (15x20x20cm 3 );  selang  aerasi; water  pump ;  gelas  penetasan;  kran  infus;  kran aerasi;  botol  sampel; petri  dish .  Kualitas  air diukur dengan menggunakan refraktometer; DO kit ;  amoniak kit ;  termometer;  pH paper . Pengamatan  vertebra  dengan  menggunakan metode  pewarnaan Alizarin  red  S dan Alcian blue yang kemudian diamati dengan menggunakan mikroskop stereo.

## Hasil dan Pembahasan
Jenis  kelainan  juvenile  ikan  nila  yang diinkubasi  pada  salinitas  0,  5,  15  dan  20  ppt meliputi scoliosis, tidak  tumbuhnya pleural
segmen ,  kelainan  vertebrae  bagian neural  spine dan haemal spine.
Berdasarkan  tabel  1  dapat  dilihat bahwa  abnormalitas  tertinggi  terdapat  pada
Gambar 1. Abnormalitas Juvenil Ikan Nila yang Ditetaskan pada Salinitas yang Berbeda. (A) Normal, (B) Scoleosis , (C) tidak tumbuhnya Pleural segmen .
Gambar 2. Abnormalitas caudal Vertebra. (A) neural spine normal, (B) a percabangan neural spine ; b, percabangan haemal spine , (C) haemal spine normal , (D) a, percabangan haemal spine .
Tabel 1.  Abnormalitas pada Vertebra Juvenil Ikan Nila Perlakuan Keabnormalan (%) ± SD Salinitas 0 ppt 0,73 ± 0,57 Salinitas 5 ppt 1,50± 0,81 Salinitas 10 ppt 0 ± 0,0 Salinitas 15 ppt 2,32 ± 0,5 Salinitas 20 ppt 2,61 ± 0,5
perlakuan  15  ppt  dan  20  ppt,  sedangkan abnormalitas  terendah  terdapat  pada  perlakuan 10  ppt.  Abnormalitas  benih  berupa Scoleosis , tidak  tumbuhnya Pleural  segmen ,  percabangan Neural spine dan Haemal spine . Kejadian  kelainan  berupa Scoleosis , tidak  tumbuhnya pleural  segmen ,  percabangan neural spine , percabangan haemal spine, hal ini menunjukkan  bahwa  salinitas  menjadi  salah satu faktor dalam memicu terjadinya peningkatan  kejadian  kelainan  pada  ikan  nila. Breden., et  al (2010) [9] menambahkan  bahwa Scoleosis adalah  kelainan  pada  rangka  tubuh yang  berupa  kelengkungan  tulang  belakang. Jawad  (2004) [10] menyatakan  bahwa  penyebab deformity biasanya juga berasal dari mutasi dan dari  efek  teratogenik,  faktor  lingkungan  yang kurang menguntungkan (temperatur air, kelarutan  oksigen,  salinitas  dan  infeksi  parasit) pada  telur  dan  larva  bisa  disebabkan  dari perlakuan inkubasi salinitas yang berbeda.

## Kesimpulan
Media penetasan salinitas yang
berbeda memberikan
pengaruh
pada abnormalitas  vertebra  ikan  nila  ( Oreochromis niloticus )  berupa  Scoleosis,  tidak  tumbuhnya pleural  segmen ,  percabangan neural  spine dan percabangan haemal spine .

## Daftar Pustaka
Ath-thar,  M.  H.  F.,  dan  Gustiano,  R.  2010. Performa  Ikan  Nila  Best  dalam  Media Salinitas.  Prosiding  Forum  Inovasi Teknologi Akuakultur. 493-499 P. Nugon,  R.  W.  2003.  Salinity  Tolerance  Of Juveniles Of Four Varieties Of Tilapia. Thesis. Millsaps College. 6-10. pp. Watanabe, S., T, Kaneko dan K, M, Lee. 2008.
Functional Morphology of Mitochondrion-Rich Cells in
Euryhaline  and  Stenohaline  Teleosts. Departmen of Aquatic Bioscience, 1(1) :1-62. Poernomo, B, S., Maslichah, M., Widjiati., Epy, M,  L.,  Endang,  D,  M  dan  Akhmad,  T, M. 2005. Penuntun Embriologi. Pustaka Melati, Surabaya. 100-110. Middaugh, D, P., John, W, F and Michael, J, M. 1990.  Vertebral  Abnormalities  in Juvenile  Inland  Silversides Menidia beryllina Exposed  to  Terbufos  During Embryogenesis.  Disease  of  Aquatic Organisms. Florida. USA. Vol. 9 : 109- 116. Bunn,  N,  A.,  Fox,  C,  J  and  Webb,  T.  2000.  A Literature  Review  of  Studies  on  Fish Egg  Mortality  :  Implications  for  The
Estimation of Spawning Stock Biomass by  The  Annual  Egg  Production Method.  Center  For  Environment Fisheries  and  Aquaculture  Science. Sheffield University. 11-20. Morisson, C, M., B, Pohajdak., M, Henry and J, R  Wright  J  R.  2003.  Structure  and Enzymatic  Removal  of  the  Chorion  of Embryos of the Nile tilapia. Journal of Fish Biology. 63, 1439-1453.
Henn, K. 2011. Limits of the Limits of the Fish Embryo Toxicity Test with Danio rerio as  an  Alternative  to  the  Acute  Fish
Toxicity Test. Disertation. Faculties for the Natural Sciences and for Mathematics  of  the  Ruperto ‐ Carola University  of  Heidelberg,  Germany.
103p.
Breden,  F.,  Kristen,  G.,  Gregory,  R,  H.,  Ge,  J and  Rob,  W.  2010. Structural  and micro-anatomical  changes  in  vertebrae associated  with  idiopathic-type  spinal curvature  in  the curveback guppy model. Scoliosis 2010, 5:10 Jawad,  L.  A.  2004.  First  Record  of  an Anomalous Mullet Fish ( Mugil cephalus ) from New Zealand. Museum of  New  Zealand  Te  Papa  Tongarewa, 15 : 121-124 .