Uji Fisiologi Pertumbuhan Jamur Trichoderma sp. dan Glicodium sp. yang Berasal dari Tanaman Jeruk
UJI FISIOLOGI PERTUMBUHAN JAMUR Trichoderma sp. DAN Gliocladium sp. YANG BERASAL DARI TANAMAN JERUK
The Test Fungi Growth Physiology of Trichoderma sp. and Gliocladium sp. from Citrus Plants
Unun Triasih 1) * , Sri Widyaningsih 1)
1 Organisasi Riset dan Pangan Pusat Riset Hortikultura dan Perkebunan
Diterima redaksi: 16 September 2022/ Direvisi: 26 November 2022/ Disetujui 28 November 2022/ Diterbitkan online: 12 Juni 2023 DOI: 10.21111/agrotech.v8i2.8604
Abstrak. Salah satu permasalahan budidaya jeruk adalah serangan penyakit yang bisa menyebabkan penurunan produksi  saat  panen.  Terdapat  jamur  antagonis  dari  tanaman  jeruk  yang  bisa  digunakan  untuk  pengendalian patogen yaitu jamur Gliocladium sp. dan Trichoderma sp. Jamur antagonis akan bisa mengendalikan patogen secara optimal  apabila mempunyai  kondisi  pertumbuhan  yang  sesuai  dengan lingkungannya.  Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui perkembangan pertumbuhan Trichoderma sp. dan Gliocladium sp. pada beberapa suhu, media, lama  pencahayaan,  dan  jenis  cahaya.  Perlakuan  yang  digunakan  adalah  empat macam  suhu  (20°C,  25°C,  30°C, 35°C), 3 media (PDA, PDAY dan CMA), beberapa lama pencahayaan (24 jam lampu 24 jam gelap, 8 jam lampu 16 jam gelap, 16 jam lampu 8 jam gelap) serta macam cahaya (cahaya yang berasal dari lampu baca yang diletakkan sangat  dekat,  cahaya  dari  lampu  yang  diletakkan  normal,  dan  gelap  yang  dibungkus  carbon).  Perlakuan menggunakan Rancangan acak lengkap (RAL) dan diulang sebanyak 5 kali. Hasil pengujian menunjukkan bahwa kedua isolat dapat berkembang optimum pada media PDA dan PDAY dengan suhu perkembangan terbaik  20°C- 25°C. Selain itu, pengujian bermacam sinar menunjukkan hasil perkembangan tercepat oleh Trichoderma sp. pada perlakuan  cahaya  lampu  normal.  Furthermore,  uji  lama  pencahayaan  terbaik  adalah  Trichoderma  sp.  dengan waktu  pencahayaan  12  jam  lampu  menyala  12  jam  gelap.  Secara  umum,  perkembangan  kedua  isolat  jamur antagonis  memiliki  keadaan  optimum  perkembangan  yang  relatif  sama,  namun  T richoderma sp.  memiliki perkembangan lebih baik pada bermacam pengujian.
Kata kunci : fisiologi , gelap-terang, media tumbuh, suhu
Abstract. One of the problems of citrus cultivation is disease attack which can cause a decrease in production during  harvest.  There  are  antagonistic  fungi  from  citrus  plants  that  can  be  used  to  control  pathogens,  namely Gliocladium sp.  and Trichoderma sp.  Antagonistic  fungi  will  be  able  to  control  pathogens  optimally if  they  have growth  conditions  that  match  their  environment.  This  study  aims  to  determine  the  growth  development  of Trichoderma sp.  and Gliocladium sp.  at  several  temperatures,  media,  exposure  lengths,  and  types  of  light.  The treatments used were four different temperatures (20°C, 25°C, 30°C, 35°C), three media (PDA, PDAY, and CMA), several exposure times (24 hours of light and 24 hours of dark, 8 hours of light and 16 hours of darkness, 16 hours of light and 8 hours of darkness) and the type of light (light from a reading lamp placed very close, light from a lamp placed habitually, and dark wrapped in carbon). The treatment used a completely randomized design (CRD) and was repeated 5 times. The test results showed that the two isolates could develop optimally on PDA and PDAY media with the best temperature of 20°C-25°C. In addition, testing of various rays showed the results of the fastest development by Trichoderma sp. under natural light treatment. Furthermore, the best length exposure test was Trichoderma sp. with a lighting time of 12 hours light and 12 hours dark. In general, the development of the two antagonistic fungal isolates had relatively the same optimal development conditions, but Trichoderma sp. has better development on various tests.
Keywords: physiology, growing media, light and dark, temperature

## Gontor AGROTECH Science Journal
Vol. 9 No. 1, Juni 2023: 1- 10 http://ejournal.unida.gontor.ac.id/index.php/agrotech
*Korespondensi email: ununtriasih82@yahoo.com Alamat :  Organisasi Riset dan pangan Pusat Riset Hortikultura dan Perkebunan

## PENDAHULUAN
Jeruk merupakan salah satu tanaman
yang sangat menguntungkan dibudidayakan  dan  mempunyai  nilai ekonomi  yang  tinggi.  Namun  dalam budidayanya  sering  mengalami  kendala salah satunya adalah perkembangan strain patogen  yang  resisten  terhadap  pestisida dan  kekhawatiran  masyarakat  terhadap residu  bahan  kimia  pada  buah  jeruk. Pengendalian penyakit tanaman selama ini menggunakan bahan kimia yang mempunyai dampak negatif untuk kesehatan manusia dan lingkungan Masyarakat  membutuhkan  pemecahan masalah  dalam  mengendalikan  patogen yang  aman,  ramah  lingkungan  dan berkelanjutan.  Salah  satunya  adalah pengendali biologis dari mikroba antagonis (Thrall et al . 2011).
Mikroba  antagonis  bisa  diperoleh dari  rhizosfer  tanah  yang  mempunyai keanekaragaman mikroba berada disekitar perakaran tanaman jeruk. Trichoderma spp., Gliocladium spp.,  dan  actynomycetes adalah  beberapa  mikroorganisme  yang berperan sebagai pengendali hayati (Sharma et  al .,  2005).  Jamur  antagonis adalah yang paling umum di antara jamur agen  biokontrol  karena  kemampuan mekanismenya  yaitu  antagonisme  dan mempercepat pertumbuhan tanaman.
Trichoderma spp. dan Gliocladium spp., serta jamur antagonis lainnya berperan penting pada  proses  ekosistem  tanah.  Jamur antagonis  secara  ekologis  relevan  tidak hanya  melindungi  tanaman  terhadap patogen,  menghasilkan  berbagai  macam zat antibiotik tetapi juga bisa mempercepat pertumbuhan  tanaman  (Harman et  al , 2004).  Genus Trichoderma termasuk  agen kontrol  biologis  yang  paling  sering digunakan sebagai agen biokontrol dengan berbagai  produk  komersial  yang  tersedia yang  mengandung  strain  jamur  ini
(Stewart, 2001). Strain T. atroviride ini juga telah terbukti meningkatkan pertumbuhan dan  bisa  mengendalikan Rhizoctonia  solani (Kandula et  al. 2015).  Hasil  pengujian  di lapang  bahwa  penggunaan Trichoderma dan Gliocladium menunjukkan  penurunan inensitas  penyakit  sampai  67%  dalam menghambat  patogen  busuk  pelepah, jamur Gliocladium dan Trichoderma bisa menekan  kerugian  hasil  panen  jagung sampai 23% (Soenartiningsih et al., 2014).
Gliocladium sp. dan species Trichoderma sp. diketahui  dapat  mematikan  spesies  jamur lainnya  dengan  memanfaatkan  protein litik,  misalnya  kitinase  (Nugroho,  2000). Meskipun  demikian,  kitinase  bukanlah penghambat  utama  jamur Gliocladium sp.
Gliocladium  virens bersifat  antibiosis  dan hiperparasit  karena  dapat  menghasilkan beberapa jenis racun, khususnya Gliovirin dan Gliotoxin juga sebagai katalis selulase yang  dapat  memisahkan  dinding  sel R. solani yang  tersusun  dari  kombinasi protein  dan  polisakarida,  β -  1  ,3-glukosa atau - 1,6 glukosa dan (kitin (β -1,4-Nacetyl glucosamine)  (Syatrawati,  2007). Produksi miselia  jamur  antagonis  dipengaruhi  oleh beberapa  faktor  antara  lain  media  kultur, suhu  cahaya  dan  kondisi  lingkungan. Media  kultur  merupakan  salah  satu langkah  penting  yang  harus  ditentukan dalam  perbanyakan  jamur  antagonis. Secara  umum,  perkecambahan  konidia antagonis  jamur  pada  suhu  kamar  30°C cukup  tinggi  dengan  lebih  banyak  dari 80%. Daya berkecambah yang tinggi sangat penting untuk pertumbuhan dan
perkembangan jamur sebagai agen biologis (Nurbailis et al.,,2018). Cahaya mempengaruhi  pertumbuhan,  reproduksi dan pemanfaatan sumber karbon.
Menurut  Gerbore et  al., (2014)  bahwa aplikasi agen biokontrol terhadap penyakit tanaman  dilapang  menunjukkan  hasil yang tidak konsisten. Agen biokontrol
Uji Fisiologi Pertumbuhan Jamur Trichoderma sp. dan Glicodium sp. yang Berasal dari Tanaman Jeruk
merupakan pengendali yang tahan terhadap  fluktuasi  kondisi  lingkungan daripada pestisida sintetis (Alabouvette et al.,. 2006).  Penelitian  pengaruh  suhu, media,  cahaya  terhadap  pertumbuhan jamur  antagonis  telah  banyak  dilakukan tetapi pengaruhnya terhadap jamur antagonis Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp. yang berasal dari tanaman jeruk belum banyak dilaporkan  terutama untuk terkait dengan  kondisi  pertumbuhan  jamur antagonis yang optimal. Untuk
mendapatkan pertumbuhan jamur antagonis yang berasal dari tanaman jeruk maka  penting  untuk  dilakukan  pengujian pertumbuhan  jamur  antagonis  pada kondisi  yang  tepat  sehingga  dapat berperan  sebagai  biokontrol  patogen. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh suhu, media, lama pencahayaan dan cahaya terhadap pertumbuhan Gliocladium sp.  dan Trichoderma sp.  yang berasal dari tanaman jeruk.

## BAHAN DAN METODE
Waktu dan tempat penelitian
Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Fitopatologi Balai Penelitian Tanaman  Jeruk  dan  Buah  Subtropika (BALITJESTRO).  Penelitian  ini  dilakukan pada bulan Januari sampai Maret 2020.

## Bahan dan alat
Bahan  penelitian  yang  digunakan meliputi isolate Trichoderma sp.dan
Gliocladium .sp.,  media  PDAY  ( Potatoes Dextrose Agar Yeast ), PDA ( Potatoes Dextrose Agar),  CMA  ( Corn  Mela  Agar ),  aquades, etanol, kapas, dan aluminium foil . Peralatan
yang  digunakan  antara  lain: autoclave , 3solate Laminar Air Flow , corebore , mikroskop BX 51, isolat jamur, mistar ukur, objek  glass,  cover  glass  dan  beberapa peralatan lainnya.
Penyiapan  isolat Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp.
Isolat Gliocladium sp. dan Trichoderma sp. merupakan isolat koleksi laboratorium Mikologi  Balitjestro.  Isolat yang  telah  ada diremajakan  di  media  tumbuh  PDA. Setelah  miselia  tumbuh  memenuhi  cawan petri  kemudian  isolat  diamati  dibawah mikroskop  dan  selanjutnya  digunakan sebagai sumber inokulum untuk perlakuan.
Pengujian  pertumbuhan Trichoderma sp. dan Gliocladium sp.  pada  beberapa media, suhu, cahaya dan lama pencahayaan
Pengujian  pada  media  ini  menggunakan tiga  media  kultur  yaitu  PDA,  PDAY  dan CMA.  Uji  pada  berbagai  cahaya  (diberi lampu  baca  sangat  dekat,  dibawah  sinar lampu  normal  gelap,  dibungkus  carbon), uji suhu pada suhu 20°C, 25°C, 30°C, 35°C, dan lama pencahayaan (8 jam lampu 16 jam gelap, 16 jam lampu 8 jam gelap,  jam gelap 24 jam lampu) menggunakan media PDA.
Media  kultur  dituang  pada  cawan  petri, kemudian  isolat Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp.  diambil  sebanyak  0,5  cm menggunakan core bor diletakkan ditengah cawan petri. Perlakuan diulang sebanyak 5 kali  dan  pengamatan  dilakukan  terhadap diameter  pertumbuhan  koloni  jamur antagonis selama 7 hari.
Pengaruh media artifisial terhadap pertumbuhan Trichoderma sp. dan Gliocladium s p.
Hasil pengujian menunjukkan adanya  interaksi  antara  berbagai  media dan  pertumbuhan  koloni.  Ketiga  media bisa untuk pertumbuhan jamur Gliocladium
sp. dan Trichoderma sp. namun media yang paling  baik  pertumbuhannya  dan  bisa mencapai  pertumbuhan  optimum  sampai tepi  cawan  petri  adalah  media  PDA  dan PDAY sebesar 9 cm (tabel 1). Koloni pada media PDA dan PDAY bisa mencapai tepi cawan  petri  pada  hari  ketujuh  setelah
inokulasi,  sedangkan  pada  media  CMA kedua jamur tidak bisa tumbuh maksimal, koloni kecil hanya 0.5 cm. Pada media PDA dan PDAY koloni Trichoderma sp. berwarna
hijau  sampai  tepi  cawan  petridish  tetapi pada  media  CMA  tidak  menunjukkan adanya  perubahan  warna  koloni  masih putih.
Tabel 1. Pengaruh beberapa media artifisial terhadap pertumbuhan koloni Trichoderma sp. dan Gliocladium s p. Jamur antagonis Jenis Media Artifisial Diameter koloni (cm) ( 𝑥̅ ±SD) Trichoderma sp. PDA 9,0 ± 0,30 b PDAY 9,0 ± 0,38 b CMA 0,5 ± 0,06 a Gliocladium sp. PDA 9,0 ± 0,50 b PDAY 9,0 ± 0,46 b CMA 0,5 ± 0,09 a Keterangan : Huruf yang sama pada satu kolom dalam tabel menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan Uji lanjut Duncan pada taraf 5%,  ( 𝑥̅ ± SD) : rata-rata±standar deviasi
Pengaruh pertumbuhan dan sporulasi  jamur  tergantung  pada  banyak faktor  seperti  komposisi  media,  suhu, komposisi kimia ringan, mikro dan makro dari substrat.(Prabhat et al , 2015). Pengujian  di  laboratorium  menunjukkan bahwa  kedua  jamur  mampu  tumbuh  di semua  media  dengan  pola  pertumbuhan yang  berbeda.  PDA  adalah  salah  satu media yang umum dipakai menumbuhkan jamur. Selain itu, media PDA ditambahkan ekstrak  yeast  yang  bisa  mempercepat pertumbuhan  koloni  jamur  antagonis. Ekstrak  yeast  dalam  media  bertindak sebagai  penginduksi  untuk  pertumbuhan jamur  tertentu  yaitu Trichoderma  viride ( Rudresh  et  al,  2005). Trichoderma  s p. mampu  tumbuh  pada  media  PDA  dan PDAY  karena Trichoderma merupakan jamur  yang  toleran  dan  pertumbuhannya sangat  cepat.  PDA  adalah  media  umum yang  paling  banyak  digunakan  dalam isolasi  jamur,  memiliki  dasar  nutrisi  yang lengkap  (Agrios,  1988).  Hal  ini  mungkin menyebabkan pertumbuhannya lebih cepat dibandingkan media yang lain. Strain T.  citrinoviride ,  dengan  pengecualian T. citrinoviride EGE-KL-72, menunjukkan pertumbuhan miselium yang baik dengan
ekstrak  ragi  dan  tepung  kedelai  (Yukzel
Gezgin, 2019). Sebagian besar
spesies Gliocladium tumbuh  dengan  cepat dalam  kultur  yang  menghasilkan  koloni yang  menyebar  dengan  tekstur  seperti kapas,  memenuhi  cawan  petri  dalam  1 minggu. Koloni  awalnya  berwarna  putih berubah  menjadi  kemerahan  atau  hijau seiring bertambahnya umur inokulasi dan bersporulasi ( Domsch et al , 2017).
Jash et al ., (2003) melaporkan bahwa media  kultur  dan  faktor  lingkungan mempengaruhi  pertumbuhan  miselium dan sporulasi Lasiodiplodia  theobromae , penambahan  ekstrak  akan  meningkatkan sporulasi  dan  pertumbuhan  miselium L. theobromae. Sharma et al.(2005) melaporkan bahwa media, suhu dan pH memiliki efek yang mendalam pada pertumbuhan jamur.
Pada  yang  kedua  hari  setelah  inkubasi, warna  koloni Trichoderma pada  medium PDA berwarna putih karena mengandung miselium.  Pada  hari  ketiga,  kemudian warnanya  berubah  menjadi  hijau,  karena pembentukan  konidia.  Menurut  Shahid et al., (2013),  pertumbuhan  koloni  jamur Trichoderma dapat  memenuhi  cawan  petri berdiameter 9 cm dalam waktu 3 hari dan genus ini menghasilkan konidia yang
Uji Fisiologi Pertumbuhan Jamur Trichoderma sp. dan Glicodium sp. yang Berasal dari Tanaman Jeruk
berwarna hijau, hijau, kuning kehijauan dan konidia hijau tua dan konsentris. meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  jika dibandingkan  dengan  perlakuan  pemberian urea.
Pengaruh  suhu  terhadap  pertumbuhan Trichoderma sp. dan Gliocladium s p.
Perbedaan suhu memberikan pengaruh yang berbeda terhadap pertumbuhan koloni jamur Gliocladium sp.  dan Trichoderma sp. Pada  suhu  30°C  pertumbuhan Trichoderma sp. mencapai 8  cm  dan  suhu  35°  diameter koloni  7  cm. Gliocladium  s p.  mempunyai koloni  lebih  kecil  dibandingkan Trichoderma s p. pada suhu 30°C-35°C yaitu 7.5 cm dan 6.8 cm.  Pertumbuhan  koloni  akan  berkurang ketika suhu meningkat diatas 30°C dan masih bisa  tumbuh  pada  35°C  tujuh  hari  setelah inokulasi.  Hal  ini  disebabkan  pertumbuhan jamur  antara  yang  satu  dengan  jamur  yang lain mempunyai respon yang berbeda dalam kondisi  suhu  yang  berbeda  (Gambar  1). Warna  koloni  pada  kedua  jamur  dari  awal sampai  hari  ketujuh  setelah  inokulasi menunjukkan warna yang berbeda (Tabel 2). Trichoderma sp.  tumbuh paling baik  dalam kisaran suhu 25 °C hingga 30 °C (Singh et al . 2014). Sharma et al (2005) melaporkan bahwa tidak  ada Trichoderma spesies  tumbuh  pada atau  di  atas  40  °C.  Menurut  Daryaei et  al (2016c)  bahwa  jumlah  konidia T.  atroviride yang dihasilkan pada suhu 30°C lebih rendah dibandingkan suhu 25 °C. Gupta dan Sharma (2013),  melaporkan  bahwa  secara  umum T. harzianum bisa  tumbuh  pada  suhu  25-30  °C pada  Potato  Dextrosa  Agar.  Perkembangan jamur  sebagai  agen  biologis.  Shahid et  al .,
(2013) melaporkan bahwa Trichoderma tumbuh  optimal  dan  menghasilkan  konidia tinggi  pada  25-30  °C. Perbedaan suhu memengaruhi produksi beberapa enzim seperti
karboksimetilselulose  dan xilanase  (Rossi et al ., 2009).
Gambar 1. Pertumbuhan koloni jamur Trichoderma sp. dan Gliocladium sp. pada beberapa suhu

## Pengaruh cahaya terhadap pertumbuhan
Trichoderma sp. dan Gliocladium s p.
Pengaruh perbedaan cahaya  terhadap pertumbuhan  isolat Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp.  menunjukkan  efek  cahaya yang  bervariasi.  Kedua  isolat  bisa  tumbuh pada  semua  perlakuan  tetapi  mempunyai respon  pertumbuhan  koloni  yang  berbeda- beda.  Pada  pengamatan  7  hari  setelah inokulasi (Gambar 2). Diameter koloni paling rendah diperoleh pada perlakuan isolat yang dibungkus  kertas  karbon  untuk  kedua  jenis jamur. Alam et al . (2001) menemukan bahwa pertumbuhan  maksimum L.  theobromae terjadi  pada  kondisi  tumbuh  dengan pencahayaan  lampu  terus  menerus.  Strain tipe liar T. virens (Gv29.8) yang ditumbuhkan di  bawah  cahaya  menunjukkan  sedikit peningkatan  ekspresi  dari  transkrip  veA (Mukherjee and Kenerley, 2010).
0 2 4 6 8 10 12 20 25 30 35 Di am ete r k o lo n i (c m ) Suhu (°C)
Trichoderma sp. Gliocladium sp.
Tabel 2. Warna koloni Trichoderma s p. dan Gliocladium sp. pada beberapa suhu inkubasi
Jamur antagonis Hari ke- Suhu 20°C 25°C 30°C 35°C Trichoderma sp. 1 Putih Putih Putih Putih 2 Putih Putih Putih Putih 3 Putih Putih Putih Putih 4 hijau muda hijau muda hijau muda hijau muda 5 hijau hijau hijau hijau 6 hijau tua hijau tua hijau tua hijau tua 7 hijau tua hijau tua hijau tua hijau tua Gliocladium sp. 1 Putih Putih Putih Putih 2 Putih Putih Putih Putih 3 Putih Putih Putih Putih 4 putih hijau muda hijau muda hijau muda 5 hijau muda hijau muda hijau muda hijau muda 6 hijau muda hijau kekuningan hijau kekuningan hijau muda 7 hijau muda hijau kekuningan hijau kekuningan hijau muda
Isolat yang dibungkus kertas karbon mempunyai  pertumbuhan  paling  rendah dibandingkan  dnegan  perlakuan  yang lainnya.  Hal  ini  disebabkan  karena  jamur pada  awal  pertumbuhan  langsung  dalam kondisi  gelap  tanpa  adanya  cahaya sehingga bisa memperlambat pertumbuhan koloni. Jamur dalam kondisi gelap tanpa cahaya hanya bisa membantu pertumbuhan  miselia  saja.  Sporulasi aseksual  di T.  reesei meskipun  diinduksi oleh  cahaya  kurang  sensitif  terhadap cahaya daripada di jamur lainnya termasuk T. atroviride dan T. virens , dalam hal  ini  galur  asli  QM6a  bersporulasi dengan  baik  juga  dalam  kegelapan, meskipun  agak  berkurang  ukurannya daripada  dalam  kondisi  ada  cahaya langsung  (Eveleigh,  1985).  Perkembangan jamur membutuhkan cahaya untuk pertumbuhannya (Seibel et al., 2009; Chen et al., 2012).
Pengaruh  lama  pencahayaan  terhadap pertumbuhan Trichoderma sp. dan Gliocladium s p.
Hasil uji lama pencahayaan
membuktikan  bahwa  siklus  kedua  jamur antagonis mengalami perbedaan
pertumbuhan  pada  masa  inkubasi  yang berbeda  (Gambar  3).  Pertumbuhan  koloni terbaik ditunjukkan pada lama pencahayaan  12  jam  lampu  terang  dan  12 jam  lampu  gelap  sebesar  9  cm.  Diameter koloni menurun  ketika diinkubasi  terang. Jamur  tampaknya  responsif  terhadap cahaya hanya setelah 16 jam pertumbuhan dan memerlukan waktu yang sama untuk tetap  menjaga  pertumbuhannya  pada kondisi gelap (Horwitz et al., 1984a) seperti yang dihasilkan pengujian ini bahwa untuk menjaga  pertumbuhannya  membutuhkan waktu  yang  sama  antara  kondisi  terang dan gelap.
pada lama pencahayaan 8 jam lampu terang  16  jam  lampu  gelap  dan  16  jam lampu  terang  8  jam  lampu  gelap  pada berkurang setelah transfer cahaya ke gelap. Pada kondisi gelap membantu pertumbuhan miselia Trichoderma sedangkan  cahaya  menuju  ke  arah pertumbuhan  konidia  dewasa  berwarna hijau tua membentuk cincin pada kondisi
Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp.  bisa tumbuh  dengan  baik  di  kondisi  gelap tetapi  diameter  koloninya  lebih  besar  di kondisi ada cahaya. Kondisi pertumbuhan terbaik pada lama pencahayaan 12 jam
Uji Fisiologi Pertumbuhan Jamur Trichoderma sp. dan Glicodium sp. yang Berasal dari Tanaman Jeruk
A. Gliocladium sp. B. Trichoderma sp.
Gambar 2. Pengaruh cahaya terhadap pertumbuhan (A. Gliocladium sp.; B. Trichoderma sp.)
terang ,12 jam gelap, hal ini sesuai dengan pernyataan  bahwa  pertumbuhan  jamur bisa tumbuh optimal pada kondisi cahaya atau  tanpa  cahaya  terus  menerus  (Rewal dan  Grewal,  1989).  Menurut  Chen  et  al (2012) produk blr-2 menekan pembentukan  stromata  di  bawah  cahaya konstan dan untuk mempercepat pembentukan  stromata  diperlukan  gelap
12  jam  atau  12  jam  terang.  Meskipun cahaya  penting  dalam  siklus  kehidupan jamur,  Friedl  et  al.  (2008b)  menekankan bahwa cahaya  hanya meningkatkan produksi  konidium T.    atroviride. Ahmed (1985)  yang  mengamati  bahwa  cahaya mendorong  pertumbuhan  dan  sporulasi Collectotrichum gloeosporoides.
.
Gambar 3. Pengaruh lama pencahayaan terhadap pertumbuhan koloni Trichoderma sp. dan Gliocladium sp.
Strain T.  atroviride tumbuh  dengan baik  antara  15°C  dan  30°C  setelah  3  hari inkubasi dalam kondisi terang dan
dapat  tumbuh  pada  suhu  15°C – 33°C
selama 3  hari dalam kondisi gelap ( Yüksel Gezgin,2019) .  Penelitian  sebelumnya  oleh
0 2 4 6 8 10 1 2 3 4 5 6 7 Di am ete r k o lo n i (c m ) Masa inkubasi (hari) Bungkus karbon
Lampu baca jarak dekat Lampu normal 0 2 4 6 8 10 1 2 3 4 5 6 7 Di am ete r k o lo n i ( cm ) Masa inkubasi (hari) Bungkus karbon Lampu baca jarak dekat Lampu normal
8.2 6.3 9 7.8 6 9 0 2 4 6 8 10 16L+8G 8L+16G 24L+24G Diameter koloni (cm) L am a p en cah ay aan Gliocladium sp. Trichoderma sp.
Daryaei  et  al.  (2016)  telah  menunjukkan bahwa produksi konidia ditingkatkan oleh koloni T.  atroviride LU132  dengan  kondisi gelap.  Pertumbuhan T.  atroviride secara konstan  pada  periode  terang  atau  12  jam gelap atau terang menunjukkan signifikan stimulasi pertumbuhan, 17 dari 95 sumber karbon  diuji  yaitu  heksosa  d-fruktosa,  d- manosa, d-galacose (Friedl et al ., 2008).

## KESIMPULAN
Jamur  antagonis Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp.  bisa  tumbuh  baik  pada media  PDA  dan  PDAY.  Pertumbuhan terbaik  kedua  jamur  antagonis  pada  suhu 20  °C  dan  25  °C.  Hasil  pengujian  kedua jamur bisa tumbuh maksimal pada cahaya lampu  normal  dan  lama  pencahayaan  12 jam terang dan 12 jam gelap.

## DAFTAR PUSTAKA
Agrios  G.  (1998)  Plant  Pathology,  In:
Noriega  Group,  editor.  3rd  ed.
Mexico: Academic Press . 803pp.
Ahmed. K.M. (1985). Effect of temperature and  light  on  the  growth  and sporulation of
Colletotrichum
gloesosporiodes Penz bangle. J Bot . 14: 155-159.
Alabouvette, C., Olivain, C. and Steinberg, C.  (2006).  Biological  control  of  plant diseases: the European situation. Eur J Plant Pathol .114:329 – 341.
Alam, M.S., M.F. Begum, M.A. Sarkar, M.R.
Islam and M.S. Alam. (2001). Effect of temperature,  light  and  media  on growth,  sporulation,  formation  of pigments and pycnidia of
Botryodiplodia  theobromae Pat. Pak.  J. Bio. Sci . 4(10): 1224-1227.
Chen,  C.L.,  Kuo,  H.C.,  Tung,  S.Y.,  Hsu, P.W.C.,  Wang,  C.L.,  Seibel,  C., Schmoll,  M.,  Chen,  R.S.  and  Wang, T.F.  (2012).  Blue  light  acts  as  a double-edged sword in regulating
sexual  development  of Hypocrea jecorina ( Trichoderma reesei ). PLoS ONE 7, e44969.
Daryaei A, Jones EE, Glare TR, Falloon RE.
(2016). Nutrient amendments affect Trichoderma atroviride conidium production, germination and bioactivity. Biol Control . 93:8 – 14. Daryaei A, Jones EE, Glare TR, Falloon RE. (2016). Biological fitness of Trichoderma atroviride during long- term storage ,  after  production  in different culture conditions. Biocontrol Sci Technol . 26:86 – 103.
Domsch  K.H.,  W.  Gams  and  T.H.
Anderson.  (2007).  Compendium  of soil fungi. Second Edition, IHWVerlag, Germany.
Eveleigh,  D.E.  (1985). Trichoderma .  In: Demainand, A.L. and Solomon N.A. (eds) Biology of Industrial
Microorganisms . Benjamin Cummings
Publishing  Co.,  California,  USA,  pp.
487 – 509. Friedl, M.A., Kubicek, C.P. and Druzhinina,  I.S.  (2008).  Carbon source dependence and
photostimulation  of  conidiation  in Hypocrea  atroviridis. Appl  Environ Microbiol . 74:245. Friedl, M.A., Kubicek, C.P. and Druzhinina,  I.S.  (2008a).  Carbon source dependence
and photostimulation  of  conidiation  in Hypocrea  atroviridis.  Applied  and Environmental  Microbiology  . 74:245 – 250.
Friedl,  M.A.,  Schmoll,  M.,  Kubicek,  C.P.
and Druzhinina, I.S. (2008b). Photostimulation
of Hypocrea atroviridis growth  occurs  due  to  a cross-talk of carbon metabolism, blue light  receptors  and  response  to oxidative stress. Microbiology.
154:1229 – 1241. Gupta V, Sharma AK. (2013). Assesment of optimum temperature of
Uji Fisiologi Pertumbuhan Jamur Trichoderma sp. dan Glicodium sp. yang Berasal dari Tanaman Jeruk
Trichoderma harzianum by monitoring  radial  growth  and population  dynamic  in  different compost  manure  and  different temperatur. Octa J Biosci. 1 (2): 151-
157.
Harman GE, Howell CR, Viterbo A, Chet I,
Lorito M. (2004). Trichoderma species- opportuninistic, avirulent plant symbionts. Nature  Rev  Microbiol .  2: 43-56.
Horwitz,  B.A.,  Gressel,  J.  and  Malkin,  S. (1984).  The  quest  for Trichoderma cryptochrome.  In:  Senger,  H.(ed.) Blue Light Effects in Biological Systems . Springer-Verlag, Berlin, pp. 237 – 249. Jash,  S.; Majumdar,  N.; Pan,  S.  (2003).
Comparative morphometry and asexual  spore  productivity  among some  species  and  isolates. Journal  of Interacadiemicia . 7:265-268
Kandula, D., Jones, E., Stewart, A., McLean,
K.  and  Hampton,  J.  (2015).
Trichoderma species for biocontrol of soil-borne  plant  pathogens  of pasture  species. Biocontrol  Sci Technol . 25:1052 – 1069.
Mukherjee, P.K. and Kenerley, C.M. (2010).
Regulation  of  morphogenesis  and biocontrol  properties  in Trichoderma
virens by  a  VELVET  protein,  Vel1. Applied and Environmental Microbiology. 76:2345 – 2352.
Nugroho,  T.T.,  Y.  Nurulita.,  dan  S.  Devi.
(2009). Produksi Kitinase Trichoderma  asprellum  TNC52  dan TNJ63 Galur Lokal Riau Menggunakan Limbah Kulit Udang. Laporan  Penelitian  Unggulan  Lokal. Pekanbaru: Lembaga Penelitian Universitas Riau.
Nurbailis,  Martinius,  Azniza  V.  (2014). Keanekaragaman jamur saprofit pada  rizosfir  tanaman  cabai  sistem konvensional  dan  organik  yang
berpotensi
mengendalikan Colletotrichum
gloeosporoides penyebab  penyakit  antraknosa  pada cabai. Jurnal  Hama  dan  Penyakit Tumbuhan Tropika . 14 (1): 16-24. Nurbailis, Martinius, Verry Azniza. (2018).
Short  Communication:  Viability  and environmental  effect  to  conidial germination  of  antagonistic  fungi that potential as biological control of Colletotrichum  gloeosporoides caused antracnose disease on chili. Biodiversitas. 19(3).
Prabhat,  K.,  Naem,  F.,  Firoz,  NK.  (2015).
Effect of Different Growth Media and
Physical Factors on Biomass
Production  of  Trichoderma  viride. People’s Journal scientific Research. 8
: 11-17.
Rewal,  N.,  Grewal,  J.S.  (1989).  Inheritance of  resistance  to Botrytis  cinerea Pers. in Cicer arietinum L.. Euphytica. 44 : 61 – 63.
Rossi-Rodrigues  BC.  (2009).  Comparative growth  of Trichoderma strains  in different  nutritional  sources,  using bioscreen  c  automated  system. Braz. J. Microbiol 40:404-410 Rudresh DL, Shivaprakash MK, Prasad RD. (2005). Effect of combined application of Rhizobium, phosphate solubilizing  bacterium  and  spp.  on growth, nutrient uptake and yield of chickpea. Appl Soil Ecol . 28(2):139-46.
Seibel, C., Gremel, G., do Nascimento Silva, R.,  Schuster,  A.,  Kubicek,  C.P.  and Schmoll, M. (2009). Light dependent roles  of  the  G  protein  a  subunit
GNA1 of Hypocrea jecorina
(anamorph Trichoderma  reesei ). BMC Biology. 7(58).
Shahid M, Srivastava M, Sharma A, Kumar V,  Pandey  S,  Singh  A.  (2013). morphological, molecular identification and ssr marker analysis
of a potential strain of Trichoderma/hypocrea for production  of  a  bioformulation. J
Plant Pathol Microbio l. 4 (10): 1-7.
Shahid M, Srivastava M, Sharma A, Kumar V,  Pandey  S,  Singh  A.  (2013).
morphological, molecular identification and ssr marker analysis of a potential strain of Trichoderma/hypocrea for production  of  a  bioformulation. J
Plant Pathol Microbiol . 4 (10): 1-7.
Sharma RL, Singh BP, Thakur MP, Thapak
SK.  (2005).  Effect  of  Media, Temperature,  pH and Light on the
Growth and Sporulation of
Fusarium  oxysporum f.  sp.  Lini (Bolley) Snyder and Hensan. Ann Pl ProtecSci . 13:172-174.
Singh A, Shahid M, Srivastava M, Pandey S,  Sharma  A,  Kumar  V.  (2014). Optimal  physical  parameters  for growth  of  Trichoderma  species  at varying  pH,  temperature  and agitation. Virol Mycol . 3 (1): 535-546.
Soenartiningsih,  Nurasiah  Djaenuddin, dan  M.  Sujak  Saenong.  (2014). Efektivitas Trichoderma sp.  dan
Gliocladium sp.  sebagai Agen Biokontrol  Hayati  Penyakit  Busuk Pelepah Daun pada Jagung.
Penelitian Pertanian Tanaman Pangan. 33(2).
Stewart, A. (2001). Commercial biocontrol- reality or fantasy. Aust Plant Pathol . 30:127 – 131.
Syatrawati.  (2007).  Parasitisme gliocladium sp. terhadap rhizoctonia solani sebagai penyebab  penyakit  rebah  kecambah ßpada jagung secara in-vitro.
Prosiding Seminar Ilmiah dan Pertemuan Tahunan PEI dan PFI XVI
Komda Sul-Sel . ISBN: 979-95025-6-7 ISBN 979-95025-6-7.
Thrall,  P.H.,  Oakeshott,  J.G.,  Fitt,  G.,
Southerton, S., Burdon, J.J.,
Sheppard,  A.,  Russell,  R.J.,  Zalucki,
M.  et  al.  (2011).  Evolution  in agriculture: the application of evolutionary  approaches  to  the management of biotic interactions in agro  ecosystems. Evol  Appl .4:  200 – 215.
Yüksel  Gezgin , Derya  Maral  Gül, Seçil Sözer Şenşatar , Can Uraz Kara, Sayit Sargın , Fazilet Vardar Sukan and Rengin Eltem. (2019). Evaluation of Trichoderma atroviride and Trichoderma citrinoviride growth profiles and their potentials  as  biocontrol  agent  and biofertilizer . T urkish Journal of Biochemistry . 45(2).