194
Sari, Heti Sartika, dkk . Efek NAA dan BAP terhadap Pembentukan Tunas, Daun, dan Tinggi Tunas : 195- 201 Efek NAA dan BAP terhadap Pembentukan Tunas, Daun, dan Tinggi Tunas Stek Mikro Nepenthes ampullaria Jack. Heti Sartika Sari, Murni Dwiati, Iman Budisantosa Fakultas Biologi Universitas Jenderal Soedirman e-mail: hety.sartika@yahoo.co.id.; murnidw@yahoo.co.id.; imanbudi_unsoed@yahoo.com

## Abstract
This study aimed to know the interaction between NAA and BAP as well as to obtain the best combination  of  both  treatments  in  promoting  the  growth  of Nepenthes  ampullaria microcutting . An experiment  arranged  in  a  factorial  Randomized  Complete  Block  Design  (RCBD)  wasapplied.  Stem segments were used as blocks, where block I was the first segment followed by the next two segments as block II and III respectively. Two factors, i.e. NAA concentrations (0, 5, 10, 15 µM) and BAP concentrations ( 0, 9 , 18 , 27 µM) were employed giving rise to 16 combination of treatments. Each treatment combination was replicated threetimes resulting in 48 experimental units. The parametersmeasured were date of shoot initiation, date of root initiation, shoot number, leaf number, root number, length of longest leafand shoot  height.  The  results  showed  that  interactionbetween  NAA  and  BAP  in  promoting N. ampullaria microcutting growth was observed.  Combination between NAA of 0 µM and BAP of 18 µMwas found to be the best in promoting N. ampullaria microcutting growth . Meanwhile, combination between NAA 0 µM and BAP 27 µM was recommended to promote shoot number of N. ampullaria . Key words : Nepenthes ampullaria , microcutting, NAA, BAP

## Abstrak
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui interaksi antara NAA dan BAP serta untuk mendapatkan kombinasi terbaik dalam memacu pertumbuhan stek mikro Nepenthesampullaria .Rancangan percobaan berupa Rancangan Acak Kelompok (RAK) dengan pola faktorial. Potongan batang digunakan sebagai blok, blok pertama adalah segmen pertama diikuti oleh dua segmen berikutnya sebagai blok II dan III. Perlakuan terdiri atas 2 (dua) faktor yaitu konsentrasi NAA (0, 5, 10, 15 µM) dan konsentrasi BAP (0, 9, 18, 27  µM).  Penelitian  terdiri  atas16  kombinasi  perlakuan,masing-masing  diulang  sebanyak3  (tiga)  kali, sehingga terdapat 48 unit percobaan. Parameter yang diukuradalah waktu inisiasi tunas, waktu inisiasi akar, jumlah tunas, jumlah daun, jumlah akar, panjang dari daun terpanjang dan tinggi tanaman. Hasil penelitian menunjukkan bahwa terdapat interaksi antara NAA dan BAP dalam menacu pertumbuhan N
ampullaria .  Kombinasi  antara  NAA  0  pM  dan  BAP  dari  18  μM  merupakan  kombinasi  terbaik  dalam memacu  pertumbuhan N.  ampullaria. Sementara  itu,  kombinasi  antara  NAA  0  pM  dan  BAP  27  pM disarankan untuk memacu jumlah tunas N. ampullaria .
Kata kunci: Nepenthes ampullaria , mikropropagasi, NAA, BAP

## Pendahuluan
Tanaman Nepenthes atau yang lebih dikenal  dengan  sebutan  tanaman  kantong semar merupakan salah satu tanaman hias unik  dan  langka.  Keunikan Nepenthes terletak  pada  ujung  daunnya  yang mengalami  modifikasi  menjadi  kantong.
Bentuk,  warna,  dan  ukuran  kantong
Nepenthes sangat  bervariasi.  Menurut Direktorat Budidaya Tanaman Hias (2006),
Nepenthes merupakan jenis tumbuhan yang termasuk dalam Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora (CITES) Appendix 1 dan 2 tahun 2003. Tanaman yang terdaftar di dalamnya merupakan jenis-jenis yang telah terancam punah.Salah  satu  contohnya  adalah
Nepenthes  ampullaria Jack.,  yang  saat  ini masuk ke dalam daftar merah International Union for Conservation of Natureand Natural Resources (IUCN). Kelangkaan N. ampullaria disebabkan oleh  kegiatan  eksplorasi  yang  berlebihan tanpa  ada  upaya  budidaya.  Selain  itu, dengan semakin menyusutnya luasan hutan yang disertai kerusakan, dikhawatirkan akan berdampak  langsung  pada  berkurangnya populasi  dan  keanekaragamannya.  Hal  ini dapat  menyebabkan  kepunahannya  jika t i d a k   d i l a k u k a n   u p a y a   u n t u k menanggulanginya.  Oleh  karena  itu,  perlu dilakukan  usaha  pelestarian  melalui mekanisme  budidaya  dan  pemuliaan N. ampullaria (Mansur, 2007). Usaha  pelestarian  yang  dapat
dilakukan  adalah  melalui  teknik  kultur in vitro, salah  satunya  dengan  cara memperbanyak  tanaman  menggunakan stek  mikro,  agar  dapat  dihasilkan  bibit tanaman dalam jumlah cukup banyak dalam waktu relatif singkat. Stek mikro merupakan potongan  batang  yang  berasal  dari  hasil kultur in  vitro .  Dalam  memperbanyak  stek diperlukan  medium  dengan  penambahan Zat Pengatur Tumbuh (ZPT). Medium yang digunakan  adalah  medium  Murashige  & Skoog. ZPT yang sering dimanfaatkan untuk memperbanyak stek mikro adalah NAA dan BAP. Naphthaleneacetic Acid (NAA) merupakan golongan auksin yang berfungsi dalam menginduksi pembentangan sel dan inisiasi  pengakaran.  Sementara  itu,  6- Benzylamino  Purin (BAP)  berfungsi merangsang pembelahan sel dalam jaringan eksplan  dan  merangsang  pertumbuhan tunas  (Wattimena et  al., 1992).  NAA  dan BAP  yang  ditambahkan  diharapkan  dapat merangsang  pertumbuhan  stek  mikro, sehingga  stek  segera  tumbuh  dan  akan memacu pembentukan tunas dan akar. Tujuan penelitian adalah untuk mengetahui interaksi  antara  NAA  dan  BAP  dalam memacu  pertumbuhan  stek  mikro N. ampullaria dan  mendapatkan  kombinasi perlakuan  NAA  dan  BAP  terbaik  dalam memacu  pertumbuhan  stek  mikro N. ampullaria.

## Metode Penelitian
P e n e l i t i a n   d i l a k s a n a k a n   d i Laboratorium Fisiologi Tumbuhan, Fakultas Biologi  Universitas  Jenderal  Soedirman Purwokerto,  pada  bulan  Agustus–
November 2014.
Metode  penelitian  yang  digunakan adalah  metode  eksperimental  dengan Rancangan Acak Kelompok (RAK) dengan pola faktorial. Sebagai blok digunakan letak ruas  batang.  Faktor  pertama  adalah  NAA yang  terdiri  atas  empat  taraf  konsentrasi, yaitu  0,  5,  10,  dan  15  µM.  Faktor  kedua adalah  BAP  dengan  empat  taraf konsentrasi,  yaitu  0,  9,  18,  dan  27  µM. Masing-masing perlakuan diulang sebanyak tiga kali.

## Cara Kerja
Medium  tanam  yang  digunakan adalah  medium  ½  MS,  dalam  pembuatan
medium  tanam  dibuat  larutan  stok  terlebih dahulu.  Pembuatan  larutan  stok  dilakukan dengan  cara  menimbang  bahan-bahan kimia  sesuai  komposisi  medium  MS.
Pembuatan  medium  tanam  dimulai denganmemasukkan 1.000 ml akuades ke dalam beaker glass, kemudian ditambahkan 160 ml larutan stok A; 1,6 ml stok B; 1,6 ml stok C; 0,8 ml stok D; 1,6 ml stok E; 32 gram gula  dan  ditambahkan  akuades  sampai volume  mencapai  1600  ml  selanjutnya dihomogenkan.  Larutan  tersebut  dibagi  ke dalam  16 beaker  glass. NAA  dan  BAP ditambahkan  pada  masing-masing beaker glass sesuai  perlakuan.  Akuades ditambahkan  sampai  volume  180  ml. Keasaman  medium  diukur  menggunakan pH  meter  hingga  mencapai  pH  5,8. Agar- agar  ditambahkan  sebanyak  1,6  gram. Akuades  ditambahkan  kembali  hingga volume  200  ml.  Larutan  medium  tersebut dipanaskan diatas kompor pemanas sampai mendidih.  Medium  tanam  yang  telah mendidih dituang ke botol kultur yang telah disiapkan.  Botol-botol  yang  telah  terisi medium  disterilkan  dengan  autoklaf  pada
0 suhu 121  C dan tekanan 0,15 MPa selama 20 menit.
Penanaman  eksplan  dilakukan dengan cara mengambil tanaman dari botol dengan pinset dan meletakkannya di dalam cawan  petri  yang  dialasi  dengan  kertas saring steril. Pucuk apikal dibuang, tanaman dibagi ke dalam beberapa ruas (ruas I, ruas II,  dan  ruas  III),  tiap  potongan  masing- masing  memiliki  1  daun.  Eksplan  tersebut ditanam  ke  dalam  botol  kultur  yang  telah berisi medium perlakuan. Selanjutnya, mulut botol  dipanaskan  di  atas  api  bunsen  dan ditutup  dengan aluminium  foil dan wraper serta diikat dengan karet gelang. Botol kultur yang  telah  berisi  eksplan  kemudian disimpan dalam ruang kulturpada suhu 18-
0
22  C,  dengan  intensitas  cahaya  yang berasal  dari  lampu  TL  sebesar  2000-3000 lux yang dinyalakan secara terus menerus.
Variabel  yang  diamati  berupa pertumbuhan  stek  mikro N.  ampullaria . Parameter  yang  diamati  meliputi  waktu inisiasi  tunas,  waktu  inisiasi  akar,  jumlah tunas,  jumlah  daun,  jumlah  akar,  panjang daun terpanjang, panjang akar terpanjang, dan tinggi tunas.
Data  yang  diperoleh  dianalisis menggunakan  Analisis  Ragam  (ANOVA) pada  taraf  kepercayaan  95  %  dan  99  %.
194

## Efek NAA dan BAP terhadap Pembentukan Tunas, Daun, dan Tinggi Tunas Stek Mikro Nepenthes ampullaria Jack.
Heti Sartika Sari, Murni Dwiati, Iman Budisantosa
Fakultas Biologi Universitas Jenderal Soedirman e-mail: hety.sartika@yahoo.co.id.; murnidw@yahoo.co.id.; imanbudi_unsoed@yahoo.com

## Abstract
This study aimed to know the interaction between NAA and BAP as well as to obtain the best combination  of  both  treatments  in  promoting  the  growth  of Nepenthes  ampullaria microcutting . An experiment  arranged  in  a  factorial  Randomized  Complete  Block  Design  (RCBD)  wasapplied.  Stem segments were used as blocks, where block I was the first segment followed by the next two segments as block II and III respectively. Two factors, i.e. NAA concentrations (0, 5, 10, 15 µM) and BAP concentrations ( 0, 9 , 18 , 27 µM) were employed giving rise to 16 combination of treatments. Each treatment combination was replicated threetimes resulting in 48 experimental units. The parametersmeasured were date of shoot initiation, date of root initiation, shoot number, leaf number, root number, length of longest leafand shoot  height.  The  results  showed  that  interactionbetween  NAA  and  BAP  in  promoting N. ampullaria microcutting growth was observed.  Combination between NAA of 0 µM and BAP of 18 µMwas found to be the best in promoting N. ampullaria microcutting growth . Meanwhile, combination between NAA 0 µM and BAP 27 µM was recommended to promote shoot number of N. ampullaria . Key words : Nepenthes ampullaria , microcutting, NAA, BAP

## Abstrak
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui interaksi antara NAA dan BAP serta untuk mendapatkan kombinasi terbaik dalam memacu pertumbuhan stek mikro Nepenthesampullaria .Rancangan percobaan berupa Rancangan Acak Kelompok (RAK) dengan pola faktorial. Potongan batang digunakan sebagai blok, blok pertama adalah segmen pertama diikuti oleh dua segmen berikutnya sebagai blok II dan III. Perlakuan terdiri atas 2 (dua) faktor yaitu konsentrasi NAA (0, 5, 10, 15 µM) dan konsentrasi BAP (0, 9, 18, 27  µM).  Penelitian  terdiri  atas16  kombinasi  perlakuan,masing-masing  diulang  sebanyak3  (tiga)  kali, sehingga terdapat 48 unit percobaan. Parameter yang diukuradalah waktu inisiasi tunas, waktu inisiasi akar, jumlah tunas, jumlah daun, jumlah akar, panjang dari daun terpanjang dan tinggi tanaman. Hasil penelitian menunjukkan bahwa terdapat interaksi antara NAA dan BAP dalam menacu pertumbuhan N ampullaria .  Kombinasi  antara  NAA  0  pM  dan  BAP  dari  18  μM  merupakan  kombinasi  terbaik  dalam memacu  pertumbuhan N.  ampullaria. Sementara  itu,  kombinasi  antara  NAA  0  pM  dan  BAP  27  pM disarankan untuk memacu jumlah tunas N. ampullaria . Kata kunci: Nepenthes ampullaria , mikropropagasi, NAA, BAP

## Pendahuluan
Tanaman Nepenthes atau yang lebih dikenal  dengan  sebutan  tanaman  kantong semar merupakan salah satu tanaman hias unik  dan  langka.  Keunikan Nepenthes terletak  pada  ujung  daunnya  yang mengalami  modifikasi  menjadi  kantong. Bentuk,  warna,  dan  ukuran  kantong Nepenthes sangat  bervariasi.  Menurut Direktorat Budidaya Tanaman Hias (2006), Nepenthes merupakan jenis tumbuhan yang termasuk dalam Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora (CITES) Appendix 1 dan 2 tahun 2003. Tanaman yang terdaftar di dalamnya merupakan jenis-jenis yang telah terancam punah.Salah  satu  contohnya  adalah
Nepenthes  ampullaria Jack.,  yang  saat  ini masuk ke dalam daftar merah International Union for Conservation of Natureand Natural Resources (IUCN). Kelangkaan N. ampullaria disebabkan oleh  kegiatan  eksplorasi  yang  berlebihan tanpa  ada  upaya  budidaya.  Selain  itu, dengan semakin menyusutnya luasan hutan yang disertai kerusakan, dikhawatirkan akan berdampak  langsung  pada  berkurangnya populasi  dan  keanekaragamannya.  Hal  ini dapat  menyebabkan  kepunahannya  jika t i d a k   d i l a k u k a n   u p a y a   u n t u k menanggulanginya.  Oleh  karena  itu,  perlu dilakukan  usaha  pelestarian  melalui mekanisme  budidaya  dan  pemuliaan N. ampullaria (Mansur, 2007). Usaha  pelestarian  yang  dapat
dilakukan  adalah  melalui  teknik  kultur in vitro, salah  satunya  dengan  cara memperbanyak  tanaman  menggunakan stek  mikro,  agar  dapat  dihasilkan  bibit tanaman dalam jumlah cukup banyak dalam waktu relatif singkat. Stek mikro merupakan potongan  batang  yang  berasal  dari  hasil kultur in  vitro .  Dalam  memperbanyak  stek diperlukan  medium  dengan  penambahan Zat Pengatur Tumbuh (ZPT). Medium yang digunakan  adalah  medium  Murashige  & Skoog. ZPT yang sering dimanfaatkan untuk memperbanyak stek mikro adalah NAA dan BAP. Naphthaleneacetic Acid (NAA) merupakan golongan auksin yang berfungsi dalam menginduksi pembentangan sel dan inisiasi  pengakaran.  Sementara  itu,  6- Benzylamino  Purin (BAP)  berfungsi merangsang pembelahan sel dalam jaringan eksplan  dan  merangsang  pertumbuhan tunas  (Wattimena et  al., 1992).  NAA  dan BAP  yang  ditambahkan  diharapkan  dapat merangsang  pertumbuhan  stek  mikro, sehingga  stek  segera  tumbuh  dan  akan memacu pembentukan tunas dan akar. Tujuan penelitian adalah untuk mengetahui interaksi  antara  NAA  dan  BAP  dalam memacu  pertumbuhan  stek  mikro N. ampullaria dan  mendapatkan  kombinasi perlakuan  NAA  dan  BAP  terbaik  dalam memacu  pertumbuhan  stek  mikro N. ampullaria.

## Metode Penelitian
P e n e l i t i a n   d i l a k s a n a k a n   d i Laboratorium Fisiologi Tumbuhan, Fakultas Biologi  Universitas  Jenderal  Soedirman Purwokerto,  pada  bulan  Agustus– November 2014. Metode  penelitian  yang  digunakan adalah  metode  eksperimental  dengan Rancangan Acak Kelompok (RAK) dengan pola faktorial. Sebagai blok digunakan letak ruas  batang.  Faktor  pertama  adalah  NAA yang  terdiri  atas  empat  taraf  konsentrasi, yaitu  0,  5,  10,  dan  15  µM.  Faktor  kedua adalah  BAP  dengan  empat  taraf konsentrasi,  yaitu  0,  9,  18,  dan  27  µM. Masing-masing perlakuan diulang sebanyak tiga kali.

## Cara Kerja
Medium  tanam  yang  digunakan adalah  medium  ½  MS,  dalam  pembuatan
medium  tanam  dibuat  larutan  stok  terlebih dahulu.  Pembuatan  larutan  stok  dilakukan dengan  cara  menimbang  bahan-bahan kimia  sesuai  komposisi  medium  MS. Pembuatan  medium  tanam  dimulai denganmemasukkan 1.000 ml akuades ke dalam beaker glass, kemudian ditambahkan 160 ml larutan stok A; 1,6 ml stok B; 1,6 ml stok C; 0,8 ml stok D; 1,6 ml stok E; 32 gram gula  dan  ditambahkan  akuades  sampai volume  mencapai  1600  ml  selanjutnya dihomogenkan.  Larutan  tersebut  dibagi  ke dalam  16 beaker  glass. NAA  dan  BAP ditambahkan  pada  masing-masing beaker glass sesuai  perlakuan.  Akuades ditambahkan  sampai  volume  180  ml. Keasaman  medium  diukur  menggunakan pH  meter  hingga  mencapai  pH  5,8. Agar- agar  ditambahkan  sebanyak  1,6  gram. Akuades  ditambahkan  kembali  hingga volume  200  ml.  Larutan  medium  tersebut dipanaskan diatas kompor pemanas sampai mendidih.  Medium  tanam  yang  telah mendidih dituang ke botol kultur yang telah disiapkan.  Botol-botol  yang  telah  terisi medium  disterilkan  dengan  autoklaf  pada
0 suhu 121  C dan tekanan 0,15 MPa selama 20 menit.
Penanaman  eksplan  dilakukan dengan cara mengambil tanaman dari botol dengan pinset dan meletakkannya di dalam cawan  petri  yang  dialasi  dengan  kertas saring steril. Pucuk apikal dibuang, tanaman dibagi ke dalam beberapa ruas (ruas I, ruas II,  dan  ruas  III),  tiap  potongan  masing- masing  memiliki  1  daun.  Eksplan  tersebut ditanam  ke  dalam  botol  kultur  yang  telah berisi medium perlakuan. Selanjutnya, mulut botol  dipanaskan  di  atas  api  bunsen  dan ditutup  dengan aluminium  foil dan wraper serta diikat dengan karet gelang. Botol kultur yang  telah  berisi  eksplan  kemudian disimpan dalam ruang kulturpada suhu 18-
0
22  C,  dengan  intensitas  cahaya  yang berasal  dari  lampu  TL  sebesar  2000-3000 lux yang dinyalakan secara terus menerus. Variabel  yang  diamati  berupa pertumbuhan  stek  mikro N.  ampullaria . Parameter  yang  diamati  meliputi  waktu inisiasi  tunas,  waktu  inisiasi  akar,  jumlah tunas,  jumlah  daun,  jumlah  akar,  panjang daun terpanjang, panjang akar terpanjang, dan tinggi tunas. Data  yang  diperoleh  dianalisis menggunakan  Analisis  Ragam  (ANOVA) pada  taraf  kepercayaan  95  %  dan  99  %.

## 196
Apabila  terdapat  perbedaan  nyata  antar perlakuan, maka dilanjutkan dengan uji BNT.

## Hasil dan Pembahasan
A. PengaruhHormon  NAA  dan  BAP terhadapWaktuInisiasi  Tunas N. ampullaria Hasil  analisis  ragam  pengaruh  NAA
dan  BAP  terhadap  waktu  inisiasi  tunas menunjukkan  bahwa  terdapat  interaksi antara NAA dan BAP yang diberikan dalam mempengaruhi waktu inisiasi tunas. Hasil uji BNT aplikasi NAA dan BAP terhadap waktu inisiasi  tunas  menunjukkan  bahwa  waktu inisiasi tunas tercepat terjadi pada kombinasi perlakuan NAA 10 µM dan BAP 9 µM (N B ) 2 1
yaitu  pada  hari  ke  7,33  (Tabel  1).  Hal  ini sesuai  dengan  George  dan  Sherrington (1984)  yang  menyatakan  bahwa  inisiasi tunas dan akar diatur oleh interaksi antara auksin dan sitokinin yang diberikan ke dalam
medium. Auksin atau sitokinin eksogen yang diberikan  akan  mempengaruhi  kandungan total  auksin  dan  sitokinin  endogen.  Oleh karena itu, eksplan perlakuan (N B ) inisiasi 2 1 tunas  lebih  cepat  apabila  dibandingkan dengan eksplan perlakuan tanpa auksin dan sitokinin  (N B )  yang  muncul  pada  hari  ke 0 0
21,33. Selanjutnya, setelah perlakuan N B 2 1
terdapat perlakuan N B (NAA 0 µM dan BAP
0 2
18  µM)  yang  memacu  inisiasi  tunas  pada hari ke 14.
Penambahan  NAA  dan  BAP  ke  dalam medium mampu mengatur pertumbuhan dan perkembangan tanaman. Menurut Wareing dan Phillips (1981) sitokinin merupakan ZPT yang  jika  dikombinasikan  dengan  auksin dapat  merangsang  pembelahan  dan menentukan  arah  diferensiasi  sel.  Peran BAP dalam menstimulir pertumbuhan tunas akan  lebih  efektif,  apabila  dalam  medium kultur cukup tersedia auksin. Tabel 1. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Waktu Inisiasi Tunas N. ampullaria (hari) NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) N0 (0 µM) 21,33    a 25,67    b 14,00    a 18,33    ab (pq) (q) (p) (pq) N1 (5 µM) 24,67    a 22,00    b 16,67    ab 17,00    a (q) (pq) (p) (pq) N2 (10 µM) 23,33    a 7,33      a 23,67    b 19,00    ab (q) (p) (q) (q) N3 (15 µM) 24,00    a 18,33    b 21,67    ab 25,00    b (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 7,90 Keterangan  :   Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal B.  PengaruhHormon NAA dan BAP terhadap Jumlah Tunas N. ampullaria Jumlah  tunas  merupakan  faktor terpenting dalam multiplikasi tanaman pada kultur in vitro . Semakin banyak tunas yang terbentuk,  semakin  banyak  peluang didapatkan  calon  tanaman.  Selanjutnya, tunas-tunas tadi dapat dipisahkan sehingga akan  diperoleh  tunas-tunas  baru  dalam jumlah yang banyak. Eksplan  yang  ditanam  pada  media perlakuan  secara  keseluruhan  mampu membentuk  tunas.  Hal  ini  menunjukkan
bahwa  eksplan  yang  ditanam  sangat responsif  terhadap  perlakuan  yang diberikan.  ZPT  yang  digunakan  tidak kehilangan  aktivitasnya  dalam  memacu pembentukan tunas.
Hasil  analisis  ragam  pengaruh  NAA dan  BAP  terhadap  jumlah  tunas N.
ampullaria menunjukkan  bahwa  terdapat interaksi  antara  NAA  dan  BAP  yang diberikan  dalam  mempengaruhi  jumlah tunas pada pengamatan 8 mst dan 12 mst. Namun,  pada  pengamatan  4  mst  hanya faktor tunggal NAA saja yang berpengaruh nyata.  Hasil  uji  lanjut  perlakuan  NAA
terhadap  jumlah  tunas N.  Ampullaria memperlihatkan bahwa perlakuan NAA 0 µM (N ) mampu menghasilkan tunas terbanyak
0 yaitu  sebesar  3,75  buah  (Tabel  2).  Hal  ini
diduga karena kandungan auksin endogen pada  eksplancukup  tinggi,  sehingga  tanpa penambahan  NAA  pun  tanaman  dapat manghasilkan tunas yang cukup banyak.
Tabel 2. Uji BNT Perlakuan NAA terhadap Jumlah Tunas N. ampullaria pada Pengamatan 4 mst NAA Rata-rata N0 (0 µM) 3,75    b N1 (5 µM) 2,5      a N2 (10 µM) 3,25    b N3 (15 µM) 2,75    a BNT 0,05 0,30 Keterangan: angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Hasil uji BNT aplikasi NAA dan BAP terhadap jumlah  tunas N.  Ampullaria pada pengamatan 8 mst dan 12 mst menunjukkan bahwa jumlah tunas pada perlakuan NAA 0 µM  (N )  meningkat  sejalan  dengan 0 peningkatan konsentrasi BAP. Peningkatan NAA  tanpa  penambahan  BAP  (B ) 0 cenderung menghambat jumlah tunas(Tabel 3). Sementara itu, uji lanjut aplikasi NAA dan BAP  terhadap  jumlah  tunas  pada pengamatan  12  mst  menunjukkan  bahwa jumlah  tunas  terbanyak  di  peroleh  pada kombinasi perlakuan NAA 0 µM dan BAP 27 µM (N B ) yaitu sebanyak 7 buah, kemudian 0 3
diikuti oleh perlakuan NAA 0 µM dan BAP 18
µM (N B ) yang menghasilkan jumlah tunas 0 2 sebanyak 5 buah. Antara N B  dan N B tidak 0 3 0 2 berbeda  nyata.  Artinya,  N B merupakan 0 2 perlakuan  yang  efisien  dalam  memacu jumlah  tunas N.  ampullaria pada  umur  12 mst.  Hal  ini  sesuai  dengan  penelitian Harahap (2010) yang menunjukkan bahwa semakin  tinggi  konsentrasi  BAP  yang diberikan akan meningkatkan pertambahan jumlah  tunas  pada  tanaman Nepenthes gracilis . Hartman et al . (1997) menyatakan bahwa  penambahan  sitokinin  ke  dalam medium  kultur in  vitro dapat  menginduksi jumlah  tunas  lebih  banyak  dalam konsentrasi tinggi. Tabel 3. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Jumlah Tunas N. ampullaria (buah) pada pengamatan 8 mst dan 12 mst Umur NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) 8 mst N0 (0 µM) 1,33    a 2,00    a 3,33    b 4,67    b (p) (p) (q) (r) N1 (5 µM) 2,67    b 2,00    a 1,00    a 1,67    a (q) (pq) (p) (pq) N2 (10 µM) 1,33    a 1,67    a 1,00    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) N3 (15 µM) 1,00    a 1,33    a 1,67    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 1,22 12 mst N0 (0 µM) 1,67    a 2,67    a 5,00    b 7,00    b (p) (p) (q) (r) N1 (5 µM) 4,00    b 2,00    a 1,00    a 2,00    a (q) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 1,67    a 1,67    a 1,00    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) N3 (15 µM) 1,00    a 1,67    a 2,00    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 1,44 Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05
Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal
Sari, Heti Sartika, dkk . Efek NAA dan BAP terhadap Pembentukan Tunas, Daun, dan Tinggi Tunas : 195- 201
Biosfera 32 (3) September 2015

## 196
Apabila  terdapat  perbedaan  nyata  antar perlakuan, maka dilanjutkan dengan uji BNT.

## Hasil dan Pembahasan

## A. PengaruhHormon  NAA  dan  BAP terhadapWaktuInisiasi  Tunas N. ampullaria
Hasil  analisis  ragam  pengaruh  NAA dan  BAP  terhadap  waktu  inisiasi  tunas menunjukkan  bahwa  terdapat  interaksi antara NAA dan BAP yang diberikan dalam mempengaruhi waktu inisiasi tunas. Hasil uji BNT aplikasi NAA dan BAP terhadap waktu inisiasi  tunas  menunjukkan  bahwa  waktu inisiasi tunas tercepat terjadi pada kombinasi perlakuan NAA 10 µM dan BAP 9 µM (N B ) 2 1 yaitu  pada  hari  ke  7,33  (Tabel  1).  Hal  ini sesuai  dengan  George  dan  Sherrington (1984)  yang  menyatakan  bahwa  inisiasi tunas dan akar diatur oleh interaksi antara auksin dan sitokinin yang diberikan ke dalam
medium. Auksin atau sitokinin eksogen yang diberikan  akan  mempengaruhi  kandungan total  auksin  dan  sitokinin  endogen.  Oleh karena itu, eksplan perlakuan (N B ) inisiasi 2 1 tunas  lebih  cepat  apabila  dibandingkan dengan eksplan perlakuan tanpa auksin dan sitokinin  (N B )  yang  muncul  pada  hari  ke 0 0

## 21,33. Selanjutnya, setelah perlakuan N B
2 1 terdapat perlakuan N B (NAA 0 µM dan BAP
0 2 18  µM)  yang  memacu  inisiasi  tunas  pada hari ke 14.
Penambahan  NAA  dan  BAP  ke  dalam medium mampu mengatur pertumbuhan dan perkembangan tanaman. Menurut Wareing dan Phillips (1981) sitokinin merupakan ZPT yang  jika  dikombinasikan  dengan  auksin dapat  merangsang  pembelahan  dan menentukan  arah  diferensiasi  sel.  Peran BAP dalam menstimulir pertumbuhan tunas akan  lebih  efektif,  apabila  dalam  medium kultur cukup tersedia auksin.
Tabel 1. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Waktu Inisiasi Tunas N. ampullaria (hari) NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) N0 (0 µM) 21,33    a 25,67    b 14,00    a 18,33    ab (pq) (q) (p) (pq) N1 (5 µM) 24,67    a 22,00    b 16,67    ab 17,00    a (q) (pq) (p) (pq) N2 (10 µM) 23,33    a 7,33      a 23,67    b 19,00    ab (q) (p) (q) (q) N3 (15 µM) 24,00    a 18,33    b 21,67    ab 25,00    b (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 7,90
Keterangan  :   Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal

## B.  PengaruhHormon NAA dan BAP
terhadap Jumlah Tunas N. ampullaria
Jumlah  tunas  merupakan  faktor terpenting dalam multiplikasi tanaman pada kultur in vitro . Semakin banyak tunas yang terbentuk,  semakin  banyak  peluang didapatkan  calon  tanaman.  Selanjutnya, tunas-tunas tadi dapat dipisahkan sehingga akan  diperoleh  tunas-tunas  baru  dalam jumlah yang banyak.
Eksplan  yang  ditanam  pada  media perlakuan  secara  keseluruhan  mampu membentuk  tunas.  Hal  ini  menunjukkan
bahwa  eksplan  yang  ditanam  sangat responsif  terhadap  perlakuan  yang diberikan.  ZPT  yang  digunakan  tidak kehilangan  aktivitasnya  dalam  memacu pembentukan tunas.
Hasil  analisis  ragam  pengaruh  NAA dan  BAP  terhadap  jumlah  tunas N. ampullaria menunjukkan  bahwa  terdapat interaksi  antara  NAA  dan  BAP  yang diberikan  dalam  mempengaruhi  jumlah tunas pada pengamatan 8 mst dan 12 mst. Namun,  pada  pengamatan  4  mst  hanya faktor tunggal NAA saja yang berpengaruh nyata.  Hasil  uji  lanjut  perlakuan  NAA
terhadap  jumlah  tunas N.  Ampullaria memperlihatkan bahwa perlakuan NAA 0 µM (N ) mampu menghasilkan tunas terbanyak 0 yaitu  sebesar  3,75  buah  (Tabel  2).  Hal  ini
diduga karena kandungan auksin endogen pada  eksplancukup  tinggi,  sehingga  tanpa penambahan  NAA  pun  tanaman  dapat manghasilkan tunas yang cukup banyak.
Tabel 2. Uji BNT Perlakuan NAA terhadap Jumlah Tunas N. ampullaria pada Pengamatan 4 mst NAA Rata-rata N0 (0 µM) 3,75    b N1 (5 µM) 2,5      a N2 (10 µM) 3,25    b N3 (15 µM) 2,75    a BNT 0,05 0,30
Keterangan: angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05
Hasil uji BNT aplikasi NAA dan BAP terhadap jumlah  tunas N.  Ampullaria pada pengamatan 8 mst dan 12 mst menunjukkan bahwa jumlah tunas pada perlakuan NAA 0 µM  (N )  meningkat  sejalan  dengan 0 peningkatan konsentrasi BAP. Peningkatan NAA  tanpa  penambahan  BAP  (B ) 0 cenderung menghambat jumlah tunas(Tabel 3). Sementara itu, uji lanjut aplikasi NAA dan BAP  terhadap  jumlah  tunas  pada pengamatan  12  mst  menunjukkan  bahwa jumlah  tunas  terbanyak  di  peroleh  pada kombinasi perlakuan NAA 0 µM dan BAP 27 µM (N B ) yaitu sebanyak 7 buah, kemudian 0 3 diikuti oleh perlakuan NAA 0 µM dan BAP 18
µM (N B ) yang menghasilkan jumlah tunas 0 2 sebanyak 5 buah. Antara N B  dan N B tidak
0 3
0 2
berbeda  nyata.  Artinya,  N B merupakan 0 2 perlakuan  yang  efisien  dalam  memacu jumlah  tunas N.  ampullaria pada  umur  12 mst.  Hal  ini  sesuai  dengan  penelitian Harahap (2010) yang menunjukkan bahwa semakin  tinggi  konsentrasi  BAP  yang diberikan akan meningkatkan pertambahan jumlah  tunas  pada  tanaman Nepenthes gracilis . Hartman et al . (1997) menyatakan bahwa  penambahan  sitokinin  ke  dalam medium  kultur in  vitro dapat  menginduksi jumlah  tunas  lebih  banyak  dalam konsentrasi tinggi.
Tabel 3. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Jumlah Tunas N. ampullaria (buah) pada pengamatan 8 mst dan 12 mst Umur NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) 8 mst N0 (0 µM) 1,33    a 2,00    a 3,33    b 4,67    b (p) (p) (q) (r) N1 (5 µM) 2,67    b 2,00    a 1,00    a 1,67    a (q) (pq) (p) (pq) N2 (10 µM) 1,33    a 1,67    a 1,00    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) N3 (15 µM) 1,00    a 1,33    a 1,67    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 1,22 12 mst N0 (0 µM) 1,67    a 2,67    a 5,00    b 7,00    b (p) (p) (q) (r) N1 (5 µM) 4,00    b 2,00    a 1,00    a 2,00    a (q) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 1,67    a 1,67    a 1,00    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) N3 (15 µM) 1,00    a 1,67    a 2,00    a 1,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 1,44
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal

## C.  PengaruhHormon  NAA  dan  BAP terhadap Jumlah Daun N. ampullaria
Hasil  analisis  ragam  pengaruh  NAA d a n   B A P  t e r h a d a p   j u m l a h   d a u n menunjukkan  bahwa  terdapat  interaksi antara NAA dan BAP dalam mempengaruhi jumlah daun, baik pada pengamatan 4 mst, 8 mst, maupun 12 mst. Hasil uji BNT aplikasi NAA dan BAP terhadap jumlah daun pada pengamatan 12 mst, jumlah daun terbanyak dihasilkan oleh NAA 0 µMdan BAP 27 µM (N B ) yaitu sebanyak 12,33 helai (Tabel 4). 0 3 Sementara itu, terdapat perlakuan lain yaitu perlakuan  NAA0  µM  dengan  penambahan
BAP  18  µM  (N B )  yang  cukup  memacu 0 2 jumlah  daun  dengan  hasil  10,67.  Jumlah daun  pada  perlakuan  N B   tidak  signifikan 0 2 terhadap  N B . Artinya,  perlakuan  tersebut 0 3 cukup  baik  dalam  memacu  jumlah  daun.
Perlakuan  N B menghasilkan  jumlah  daun 0 2 paling banyak yakni 4,33 pada pengamatan 4 mst. Sementara itu, pada umur yang sama
(4  mst)  perlakuan  N B mempunyai  jumlah 0 3 daun  lebih  rendah  daripada  N B yakni 0 2 sebanyak 2,00. Artinya, perlakuan N B pada 0 2 umur  4  mst  paling  baik  memacu pertumbuhan jumlah daun.
198
Tabel 4. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Jumlah Daun N. ampullaria (helai) pada pengamatan 4, 8, dan 12 mst
Umur NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) 4 mst N0 (0 µM) 1,00    a 1,00    a 4,33    b 2,00    b (p) (p) (q) (p) N1 (5 µM) 1,00    a 1,33    a 1,00    a 2,00    b (p) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 1,33    a 3,67    b 2,00    a 0,67    a (pq) (r) (q) (p) N3 (15 µM) 0,33    a 1,00    a 1,00    a 0,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 1,25 8 mst N0 (0 µM) 5,33    bc 2,67    a 6,33    b 9,00    c (q) (p) (q) (r) N1 (5 µM) 6,67    c 4,67    ab 3,67    a 6,00    b (q) (pq) (p) (pq) N2 (10 µM) 3,67    ab 6,67    b 2,00    a 4,00    ab (p) (q) (p) (p) N3 (15 µM) 2,67    a 3,00    a 2,67    a 2,67    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 2,59 12 mst N0 (0 µM) 8,33    b 4,33    a 10,67   b 12,33  c (q) (p) (qr) (r) N1 (5 µM) 12,00   c 7,00    ab 5,33    a 7,33    b (q) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 5,00    ab 8,00    b 3,00    a 5,33    ab (pq) (q) (p) (pq) N3 (15 µM) 3,67    a 4,33    a 3,33    a 3,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 3,58
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal
Pada  pengamatan  4  mst,  jumlah  daun perlakuan  N B sebanyak  4,33  helai.
0 2
Pertambahan  jumlah  daun  perlakuan  N B 0 2 pada pengamatan 8 mst tidak pesat hanya 2 helai  saja.  Namun,  pada  perlakuan  N B 0 3 pengamatan  4  mst  menghasilkan  jumlah daun  sebesar  2,00  helai  dan  pada pengamatan 8 mst jumlah daun bertambah menjadi  9,00  helai.  Penambahan  cukup
pesat  sebesar  7  helai  daun  selama  4 minggu.  Ada  pergeseran  penambahan jumlah daun terbanyak pada pengmatan 4 dan 8 mst dari N B menjadi N B  (Tabel 4 dan
0 2 0 3
Gambar  1).  Hal  tersebut  diduga  terjadi karena  perubahan  respon  fisiologi  pada masing-masing  tanaman  yang  bervariasi, terkait  dengan  kecocokan  dari  ZPT  yang diberikan ke dalam medium. Gambar 1. Grafik  Hubungan  antara  Jumlah  Daun  Perlakuan  N B ,  N B ,  N B , 0 0 0 1 0 2 N B padapengamatan 4, 8, dan 12 mst 0 3 Penelitian  sebelumnya  oleh  Adrian
(2011),  menggunakan  media  MS  dengan penambahan  BAP  1,3  µM  dapat  memacu jumlah  daun N.  alata terbanyak  sebesar 12,00 helai pada pengamatan 12 mst. Hasil penelitian  ini,  jumlah  daun N.  ampullaria terbanyak dihasilkan pada perlakuan NAA 0 µM  dan  BAP  27  µM  (N B )  sebesar  12,33 0 3
helai  daun  pada  pengamatan  12  mst. Penelitian lain yang dilakukan oleh Yudhanto (2012)  menunjukkan  bahwa  pertumbuhan tanaman N.  mirabilis yang  ditanam  pada media MS dengan kombinasi NAA 10,7 µM dan BAP 11,1 µMmenghasilkan jumlah daun terbanyak  yaitu  sebesar  19,5  helai  daun pada pengamatan 10 mst. D.  Pengaruh  Hormon  NAA  dan  BAP terhadap Panjang DaunTerpanjang N. ampullaria Hasil analisis ragam aplikasi NAA dan
BAP  terhadap  panjang  daun  terpanjang menunjukkan  bahwa  terdapat  interaksi antara NAA dan BAP. Hasil uji BNT aplikasi NAA  dan  BAP  terhadap  panjang  daun terpanjang  pada  pengamatan  12  mst, panjang  daun  terpanjang  dihasilkan  oleh NAA 0 µMdan BAP 18 µM (N B )yaitu 1,47 0 2 cm. Pada konsentrasi NAA 0 µM dan dengan ditingkatkannya konsentrasi BAP menjadi 27 µM  (N B ),  diperoleh  panjang  daun 0 3 terpanjang  sebesar  0,63  cm.  Hal  ini mengindikasikan  bahwatanpa  NAA,  BAP efektif  mempengaruhi  panjang  daun terpanjang dalam konsentrasi yang sedang (Tabel 5). Penelitian sebelumnya oleh Alitalia (2008),  menunjukkan  bahwa  pemberian BAP 4,4 µM mampu menghasilkan panjang daun terpanjang sebesar 1,98 cm. Apabila konsentrasi  BAP  ditingkatkan  menjadi  8,8 µM, maka panjang daun sebesar 0,91 cm. Hal ini mengindikasikan bahwa BAP efektif digunakan dalam konsentrasi yang sedang.

## Biosfera 32 (3) September 2015

## C.  PengaruhHormon  NAA  dan  BAP terhadap Jumlah Daun N. ampullaria
Hasil  analisis  ragam  pengaruh  NAA d a n   B A P  t e r h a d a p   j u m l a h   d a u n menunjukkan  bahwa  terdapat  interaksi antara NAA dan BAP dalam mempengaruhi jumlah daun, baik pada pengamatan 4 mst, 8 mst, maupun 12 mst. Hasil uji BNT aplikasi NAA dan BAP terhadap jumlah daun pada pengamatan 12 mst, jumlah daun terbanyak dihasilkan oleh NAA 0 µMdan BAP 27 µM (N B ) yaitu sebanyak 12,33 helai (Tabel 4). 0 3 Sementara itu, terdapat perlakuan lain yaitu perlakuan  NAA0  µM  dengan  penambahan
BAP  18  µM  (N B )  yang  cukup  memacu 0 2 jumlah  daun  dengan  hasil  10,67.  Jumlah daun  pada  perlakuan  N B   tidak  signifikan 0 2 terhadap  N B . Artinya,  perlakuan  tersebut 0 3 cukup  baik  dalam  memacu  jumlah  daun. Perlakuan  N B menghasilkan  jumlah  daun 0 2 paling banyak yakni 4,33 pada pengamatan 4 mst. Sementara itu, pada umur yang sama (4  mst)  perlakuan  N B mempunyai  jumlah 0 3 daun  lebih  rendah  daripada  N B yakni 0 2 sebanyak 2,00. Artinya, perlakuan N B pada 0 2 umur  4  mst  paling  baik  memacu pertumbuhan jumlah daun.
198
Tabel 4. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Jumlah Daun N. ampullaria (helai) pada pengamatan 4, 8, dan 12 mst
Umur NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) 4 mst N0 (0 µM) 1,00    a 1,00    a 4,33    b 2,00    b (p) (p) (q) (p) N1 (5 µM) 1,00    a 1,33    a 1,00    a 2,00    b (p) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 1,33    a 3,67    b 2,00    a 0,67    a (pq) (r) (q) (p) N3 (15 µM) 0,33    a 1,00    a 1,00    a 0,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 1,25 8 mst N0 (0 µM) 5,33    bc 2,67    a 6,33    b 9,00    c (q) (p) (q) (r) N1 (5 µM) 6,67    c 4,67    ab 3,67    a 6,00    b (q) (pq) (p) (pq) N2 (10 µM) 3,67    ab 6,67    b 2,00    a 4,00    ab (p) (q) (p) (p) N3 (15 µM) 2,67    a 3,00    a 2,67    a 2,67    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 2,59 12 mst N0 (0 µM) 8,33    b 4,33    a 10,67   b 12,33  c (q) (p) (qr) (r) N1 (5 µM) 12,00   c 7,00    ab 5,33    a 7,33    b (q) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 5,00    ab 8,00    b 3,00    a 5,33    ab (pq) (q) (p) (pq) N3 (15 µM) 3,67    a 4,33    a 3,33    a 3,00    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 3,58
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal
Pada  pengamatan  4  mst,  jumlah  daun perlakuan  N B sebanyak  4,33  helai. 0 2 Pertambahan  jumlah  daun  perlakuan  N B 0 2 pada pengamatan 8 mst tidak pesat hanya 2 helai  saja.  Namun,  pada  perlakuan  N B 0 3 pengamatan  4  mst  menghasilkan  jumlah daun  sebesar  2,00  helai  dan  pada pengamatan 8 mst jumlah daun bertambah menjadi  9,00  helai.  Penambahan  cukup
pesat  sebesar  7  helai  daun  selama  4 minggu.  Ada  pergeseran  penambahan jumlah daun terbanyak pada pengmatan 4 dan 8 mst dari N B menjadi N B  (Tabel 4 dan
0 2 0 3
Gambar  1).  Hal  tersebut  diduga  terjadi karena  perubahan  respon  fisiologi  pada masing-masing  tanaman  yang  bervariasi, terkait  dengan  kecocokan  dari  ZPT  yang diberikan ke dalam medium.
Gambar 1. Grafik  Hubungan  antara  Jumlah  Daun  Perlakuan  N B ,  N B ,  N B ,
0 0 0 1 0 2

## N B padapengamatan 4, 8, dan 12 mst 0 3
Penelitian  sebelumnya  oleh  Adrian (2011),  menggunakan  media  MS  dengan penambahan  BAP  1,3  µM  dapat  memacu jumlah  daun N.  alata terbanyak  sebesar 12,00 helai pada pengamatan 12 mst. Hasil penelitian  ini,  jumlah  daun N.  ampullaria terbanyak dihasilkan pada perlakuan NAA 0 µM  dan  BAP  27  µM  (N B )  sebesar  12,33 0 3 helai  daun  pada  pengamatan  12  mst. Penelitian lain yang dilakukan oleh Yudhanto (2012)  menunjukkan  bahwa  pertumbuhan tanaman N.  mirabilis yang  ditanam  pada media MS dengan kombinasi NAA 10,7 µM dan BAP 11,1 µMmenghasilkan jumlah daun terbanyak  yaitu  sebesar  19,5  helai  daun pada pengamatan 10 mst.
D.  Pengaruh  Hormon  NAA  dan  BAP terhadap Panjang DaunTerpanjang N. ampullaria
Hasil analisis ragam aplikasi NAA dan
BAP  terhadap  panjang  daun  terpanjang menunjukkan  bahwa  terdapat  interaksi antara NAA dan BAP. Hasil uji BNT aplikasi NAA  dan  BAP  terhadap  panjang  daun terpanjang  pada  pengamatan  12  mst, panjang  daun  terpanjang  dihasilkan  oleh NAA 0 µMdan BAP 18 µM (N B )yaitu 1,47 0 2 cm. Pada konsentrasi NAA 0 µM dan dengan ditingkatkannya konsentrasi BAP menjadi 27 µM  (N B ),  diperoleh  panjang  daun 0 3 terpanjang  sebesar  0,63  cm.  Hal  ini mengindikasikan  bahwatanpa  NAA,  BAP efektif  mempengaruhi  panjang  daun terpanjang dalam konsentrasi yang sedang (Tabel 5). Penelitian sebelumnya oleh Alitalia (2008),  menunjukkan  bahwa  pemberian BAP 4,4 µM mampu menghasilkan panjang daun terpanjang sebesar 1,98 cm. Apabila konsentrasi  BAP  ditingkatkan  menjadi  8,8 µM, maka panjang daun sebesar 0,91 cm. Hal ini mengindikasikan bahwa BAP efektif digunakan dalam konsentrasi yang sedang.

## 200
diduga  menjadi  penyebabnya  adalah potongan  bagian  batang  yang  diharapkan menjadi  tempat  munculnya  akar  dengan jarak  terlalu  pendek.  Sebagian  besar eksplan tidak mampu menumbuhkan akar, sampai  akhir  waktu  pengamatan  12  mst. Sebanyak  tiga  buah  eksplan  mampu menumbuhkan  akar  yaitu  perlakuan  N B , 0 0 N B , dan N B . 1 1 2 2 Hasil  pengamatan  secara  visual menunjukkan bahwa pertumbuhan eksplan yang paling baik ditunjukkan pada perlakuan N B .  Hal  ini  dapat  dilihat  dari  kesehatan 0 2 eksplan,  jumlah  daun,  ukuran  daun terpanjang,  banyaknya  tunas,  dan kemampuan  tanaman  dalam  membentuk kantong. Selanjutnya, diikuti oleh tanaman N B  dengan jumlah tunas dan jumlah daun 0 3
yang paling banyak. Akan tetapi, tunas dan daun  yang  dihasilkan  pada  tanaman perlakuan  N B berukuran  kecil  serta  tidak 0 3 membentuk kantong.

## Simpulan dan Saran A.  Simpulan
Berdasarkan  hasil  dan  pembahasan yang  telah  diuraikan  tersebut,  maka  dapat diambil  kesimpulan  terdapat  interaksi pemberian  hormon  NAA  dan  BAP  dalam memacu  pertumbuhan N.  ampullaria. Kombinasi perlakuan NAA 0 µM dan BAP 18 µM (N B ) merupakan kombinasi yang paling 0 2
baik  dalam  memacu  pertumbuhan N. ampullaria. B.  Saran Untuk  memacu  pertumbuhan N. ampullaria secara in vitro dapat digunakan BAP  18  µM.  Sementara  itu,  untuk meningkatkan  jumlah  tunas  dapat digunakan BAP 27 µM. Hasil penelitian ini diharapkan  dapat  menunjang  usaha konservasi  tanaman N.  ampullaria yang semakin  sedikit  jumlahnya  di  alam  dan usaha budidaya N. ampullaria.

## Daftar Pustaka
Adrian, 2011. Pengaruh Pemberian Hormon BAP  terhadap  Multiplikasi  Tunas T u m b u h a n   K a n t u n g   S e m a r ( Nepenthes alata Blanco) pada Media Tanam Murashige dan Skoog dengan Teknik In  Vitro. Skripsi.  Bogor: Departemen Konservasi Sumberdaya Hutan  dan  Ekowisata  Fakultas Kehutanan. Institut Pertanian Bogor. Alitalia, Y., 2008. Pengaruh Pemberian BAP dan NAA terhadap Pertumbuhan dan Perkembangan Tunas Mikro Kantong Semar ( Nepenthes mirabilis ) secara In Vitro .  Skripsi.  Bogor:  Program  Studi Hortikultura  Fakultas  Pertanian. Institut Pertanian Bogor. Direktorat  Budidaya  Tanaman  Hias,  2006. Profil  Tanaman  Hias:  Zingiberaceae, Phalaenopsis,  Cordyline.  Direktorat Jenderal  Hortikultura.  Departemen Pertanian. George,  E.  F.  &  Sherrington,  P.  D.,  1984. Plant Propagation by Tissue Culture . H a n d b o o k   a n d   D i r e c t o r y   o f Commercial  Laboratories.  England: Exegetis Ltd. Harahap, A. S., 2010. Mikropropogasi Tunas Kantong  Semar  ( Nepenthes  gracillis Korth.)   dengan Pemberian NAA dan BAP secara In Vitro. Skripsi. Medan: Departemen  Budidaya  Pertanian Universitas Sumatera Utara. Hartmann H. T., Kester D. E., Davies F. T., & Geneve,  R.  L.,  1997. Plant P r o p a g a t i o n .   P r i n c i p l e s   a n d Practicles. Sixth  Edition . New  Delhi: Prentice-Hall of India Private Limited. Mansur,  M.,    2007. Nepenthes  Kantong Semar  yang  Unik .    Cetakan  ketiga. Jakarta:  Penebar Swadaya. Wareing, P. F. & Phillips, I. D. J., 1981. The Control of Growth and Differentation in Plant . Oxford: Pergamon Press. Wattimena, G. A., Gunawan, L. W., Mattjik, N. A., Syamsudin, E., Wiendi, N. M. A., &  Ernawati,  A.,  1992.  Bioteknologi Tanaman.  Bogor:  Institut  Pertanian Bogor. Yudhanto, A. S., 2012. Pengaruh Kombinasi NAA  dengan  Sitokinin  (BAP,  Kinetin dan  2iP)  terhadap  Daya  Ploriferasi Tanaman Kantong Semar ( Nepenthes mirabilis )  secara In  Vitro. Skripsi. Bogor:  Departemen  Agronomi danHortikultura.  Institut  Pertanian Bogor. Tabel 5. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Panjang Daun Terpanjang N. ampullaria (cm) pada Pengamatan 12 mst NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) N0 (0 µM) 0,87    b 0,30    a 1,47    c 0,63    ab (q) (p) (r) (pq) N1 (5 µM) 1,33    c 0,43    a 1,30    c 0,83    b (q) (p) (q) (p) N2 (10 µM) 0,33    a 1,13    b 0,77    b 0,37    a (p) (r) (qr) (pq) N3 (15 µM) 0,43    a 0,47    a 0,30    a 0,47    ab (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 0,42 Keterangan:  Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal E.  Pengaruh  Hormon  NAA  dan  BAP terhadap Tinggi  Tunas N. ampullaria Hasil analisis ragam aplikasi NAA dan BAP  terhadap  tinggi  tunas N.  ampullaria menunjukkan bahwa terdapat interaksi NAA dan BAP. Hasil uji BNT pengaruh NAA dan BAP  terhadap  tinggi  tunas  menunjukkan bahwa  tinggi  tunas  yang  paling  baik dihasilkan pada kombinasi perlakuan NAA 5 µM dan BAP 0 µM (N B ) yaitu sebesar 1,20 1 0
cm (Tabel 6). Hasil yang tidak berbeda jauh
juga ditunjukkan oleh perlakuan NAA 0 µM dan  BAP  18  µM  (N B )  yaitu  sebesar  1,13 0 2
c m .   H a l   i n i   m e n u n j u k k a n   u n t u k menghasilkan  tanaman  yang  cukup  tinggi hanya  diperlukan  konsentrasi  NAA  yang cukup rendah bahkan tanpa pemberian BAP. Pertumbuhan tanaman N. ampullaria cukup lambat.  Secara  genetis  tanaman  tinggi N. ampullaria relatif  lebih  pendek  apabila dibandingkan  dengan  tinggi  tanaman Nepenthes spesies lain. Tabel 6. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Tinggi Tunas N. ampullaria (cm) pada Pengamatan 12 mst NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) N0 (0 µM) 1,00    bc 0,63    a 1,13    b 0,87    a (q) (p) (q) (pq) N1 (5 µM) 1,20    c 0,73    ab 0,87    ab 0,73    a (q) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 0,67    a 1,03    b 0,83    ab 0,67    a (p) (q) (pq) (p) N3 (15 µM) 0,80    ab 0,87    ab 0,67    a 0,67    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 0,33 Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal Aplikasi NAA dan BAP pada penelitian ini tidak dapat memacu pembentukan akar
N. ampullaria . Diduga faktor browning pada b a g i a n   b a w a h   e k s p l a n l a h   y a n g menyebabkan  ketidakmampuan  eksplan dalam  membentuk  akar.  Faktor  lain  yang
diduga  menjadi  penyebabnya  adalah potongan  bagian  batang  yang  diharapkan menjadi  tempat  munculnya  akar  dengan jarak  terlalu  pendek.  Sebagian  besar eksplan tidak mampu menumbuhkan akar, sampai  akhir  waktu  pengamatan  12  mst. Sebanyak  tiga  buah  eksplan  mampu menumbuhkan  akar  yaitu  perlakuan  N B , 0 0 N B , dan N B .
1 1 2 2
Hasil  pengamatan  secara  visual menunjukkan bahwa pertumbuhan eksplan yang paling baik ditunjukkan pada perlakuan N B .  Hal  ini  dapat  dilihat  dari  kesehatan 0 2 eksplan,  jumlah  daun,  ukuran  daun terpanjang,  banyaknya  tunas,  dan kemampuan  tanaman  dalam  membentuk kantong. Selanjutnya, diikuti oleh tanaman N B  dengan jumlah tunas dan jumlah daun 0 3 yang paling banyak. Akan tetapi, tunas dan daun  yang  dihasilkan  pada  tanaman perlakuan  N B berukuran  kecil  serta  tidak 0 3 membentuk kantong.

## Simpulan dan Saran A.  Simpulan
Berdasarkan  hasil  dan  pembahasan yang  telah  diuraikan  tersebut,  maka  dapat diambil  kesimpulan  terdapat  interaksi pemberian  hormon  NAA  dan  BAP  dalam memacu  pertumbuhan N.  ampullaria. Kombinasi perlakuan NAA 0 µM dan BAP 18 µM (N B ) merupakan kombinasi yang paling 0 2 baik  dalam  memacu  pertumbuhan N. ampullaria.

## B.  Saran
Untuk  memacu  pertumbuhan N. ampullaria secara in vitro dapat digunakan BAP  18  µM.  Sementara  itu,  untuk meningkatkan  jumlah  tunas  dapat digunakan BAP 27 µM. Hasil penelitian ini diharapkan  dapat  menunjang  usaha konservasi  tanaman N.  ampullaria yang semakin  sedikit  jumlahnya  di  alam  dan usaha budidaya N. ampullaria.

## Daftar Pustaka
Adrian, 2011. Pengaruh Pemberian Hormon BAP  terhadap  Multiplikasi  Tunas T u m b u h a n   K a n t u n g   S e m a r ( Nepenthes alata Blanco) pada Media Tanam Murashige dan Skoog dengan Teknik In  Vitro. Skripsi.  Bogor:
Departemen Konservasi Sumberdaya Hutan  dan  Ekowisata  Fakultas Kehutanan. Institut Pertanian Bogor.
Alitalia, Y., 2008. Pengaruh Pemberian BAP dan NAA terhadap Pertumbuhan dan Perkembangan Tunas Mikro Kantong Semar ( Nepenthes mirabilis ) secara In Vitro .  Skripsi.  Bogor:  Program  Studi Hortikultura  Fakultas  Pertanian. Institut Pertanian Bogor.
Direktorat  Budidaya  Tanaman  Hias,  2006. Profil  Tanaman  Hias:  Zingiberaceae, Phalaenopsis,  Cordyline.  Direktorat Jenderal  Hortikultura.  Departemen Pertanian.
George,  E.  F.  &  Sherrington,  P.  D.,  1984. Plant Propagation by Tissue Culture . H a n d b o o k   a n d   D i r e c t o r y   o f Commercial  Laboratories.  England: Exegetis Ltd.
Harahap, A. S., 2010. Mikropropogasi Tunas Kantong  Semar  ( Nepenthes  gracillis Korth.)   dengan Pemberian NAA dan BAP secara In Vitro. Skripsi. Medan: Departemen  Budidaya  Pertanian Universitas Sumatera Utara.
Hartmann H. T., Kester D. E., Davies F. T., & Geneve,  R.  L.,  1997. Plant P r o p a g a t i o n .   P r i n c i p l e s   a n d Practicles. Sixth  Edition . New  Delhi: Prentice-Hall of India Private Limited. Mansur,  M.,    2007. Nepenthes  Kantong Semar  yang  Unik .    Cetakan  ketiga. Jakarta:  Penebar Swadaya. Wareing, P. F. & Phillips, I. D. J., 1981. The Control of Growth and Differentation in Plant . Oxford: Pergamon Press. Wattimena, G. A., Gunawan, L. W., Mattjik, N. A., Syamsudin, E., Wiendi, N. M. A., &  Ernawati,  A.,  1992.  Bioteknologi Tanaman.  Bogor:  Institut  Pertanian Bogor.
Yudhanto, A. S., 2012. Pengaruh Kombinasi NAA  dengan  Sitokinin  (BAP,  Kinetin dan  2iP)  terhadap  Daya  Ploriferasi Tanaman Kantong Semar ( Nepenthes mirabilis )  secara In  Vitro. Skripsi. Bogor:  Departemen  Agronomi danHortikultura.  Institut  Pertanian Bogor.
Tabel 5. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Panjang Daun Terpanjang N. ampullaria (cm) pada Pengamatan 12 mst NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) N0 (0 µM) 0,87    b 0,30    a 1,47    c 0,63    ab (q) (p) (r) (pq) N1 (5 µM) 1,33    c 0,43    a 1,30    c 0,83    b (q) (p) (q) (p) N2 (10 µM) 0,33    a 1,13    b 0,77    b 0,37    a (p) (r) (qr) (pq) N3 (15 µM) 0,43    a 0,47    a 0,30    a 0,47    ab (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 0,42 Keterangan:  Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05
Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal

## E.  Pengaruh  Hormon  NAA  dan  BAP terhadap Tinggi  Tunas N. ampullaria
Hasil analisis ragam aplikasi NAA dan BAP  terhadap  tinggi  tunas N.  ampullaria menunjukkan bahwa terdapat interaksi NAA dan BAP. Hasil uji BNT pengaruh NAA dan BAP  terhadap  tinggi  tunas  menunjukkan bahwa  tinggi  tunas  yang  paling  baik dihasilkan pada kombinasi perlakuan NAA 5 µM dan BAP 0 µM (N B ) yaitu sebesar 1,20 1 0 cm (Tabel 6). Hasil yang tidak berbeda jauh
juga ditunjukkan oleh perlakuan NAA 0 µM dan  BAP  18  µM  (N B )  yaitu  sebesar  1,13 0 2 c m .   H a l   i n i   m e n u n j u k k a n   u n t u k menghasilkan  tanaman  yang  cukup  tinggi hanya  diperlukan  konsentrasi  NAA  yang cukup rendah bahkan tanpa pemberian BAP. Pertumbuhan tanaman N. ampullaria cukup lambat.  Secara  genetis  tanaman  tinggi N. ampullaria relatif  lebih  pendek  apabila dibandingkan  dengan  tinggi  tanaman Nepenthes spesies lain.
Tabel 6. Uji BNT Interaksi Perlakuan NAA dan BAP terhadap Tinggi Tunas N. ampullaria (cm) pada Pengamatan 12 mst
NAA BAP B0 (0 µM) B1 (9 µM) B2 (18 µM) B3 (27 µM) N0 (0 µM) 1,00    bc 0,63    a 1,13    b 0,87    a (q) (p) (q) (pq) N1 (5 µM) 1,20    c 0,73    ab 0,87    ab 0,73    a (q) (p) (p) (p) N2 (10 µM) 0,67    a 1,03    b 0,83    ab 0,67    a (p) (q) (pq) (p) N3 (15 µM) 0,80    ab 0,87    ab 0,67    a 0,67    a (p) (p) (p) (p) BNT 0,05 = 0,33
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 0,05 Huruf a, b, dan c merupakan tanda beda secara vertikal Huruf p, q, dan r merupakan tanda beda secara horizontal
Aplikasi NAA dan BAP pada penelitian ini tidak dapat memacu pembentukan akar N. ampullaria . Diduga faktor browning pada
b a g i a n   b a w a h   e k s p l a n l a h   y a n g menyebabkan  ketidakmampuan  eksplan dalam  membentuk  akar.  Faktor  lain  yang