BioEksakta: Jurnal Ilmiah Biologi Unsoed Volume 4 Nomor 1 (2022): 19-27 E-ISSN: 2714-8564

## Identifikasi dan Uji Potensi Amilolitik Isolat Jamur Pendegradasi Sampah Organik
Insaaniy Mahdiyatul Haqq, Ratna Stia Dewi, Aris Mumpuni, Arif Rahman Hikam, Dwiana Muflihah Yulianti
Fakultas Biologi, Universitas Jenderal Soedirman Jl. dr. Suparno 63, Purwokerto, 53122 *Email : insaaniy.haqq@mhs.unsoed.ac.id
Rekam Jejak Artikel:
Diterima  : 23/08/2021 Disetujui  : 22/06/2022

## Abstract
Organic  waste  is  composed  of  organic  compounds.  The  accumulation  of  organic  waste  is  a serious problem. Fungal have an important role in degrading organic waste in the composting process. Biodegradation of organic waste is closely related to fungal ability to hydrolyze starch. The purpose of this study was to know fungi isolate which hydrolyze starch from organic waste and amylolytic potential of the isolate. This research was conducted by survey and experimental method. Kitchen waste samples consist of food waste and other organic waste taken from homes in Bancarkembar, Bobosan, Grendeng, Karangwangkal, Pabuaran, Purwanegara, and Sumampir village. A screening test with Starch Agar medium was used to know amylolytic potential of the isolates. Result showed there were eight isolates which have potential to hydrolyze starch. Six isolates which have higher amylolitic index were identified as Fusarium sp., Aspergillus sp., and Penicillium sp.  Furthermore,  to  determine  the  amylolytic  activity  quantitatively,  the  DNS method  was  used  to  measure  glucose  levels.  Fusarium  sp.  had  the  highest  starch  degradation activity with the average glucose content of the medium Fusarium sp. as much as 3,568.63 ppm.
Keyword : amylolytic, degradation, fungi, glucose, organic waste

## Abstrak
Sampah organik merupakan sampah yang tersusun dari senyawa organik. Penumpukan sampah organik  cukup  menjadi  masalah  serius.  Jamur  memiliki  peran  penting  untuk  mendegradasi sampah  organik  dalam  proses  pengomposan.  Biodegradasi  sampah  organik  berkaitan  erat dengan  kemampuan  jamur  dalam  menghidrolisis  senyawa  amilum.  Tujuan  dari  penelitian  ini yaitu  mengetahui  isolat  jamur  pendegradasi  amilum  yang  diperoleh  dari  sampah  organik  dan mengetahui potensi amilolitik dari isolat jamur tersebut. Penelitian ini dilakukan dengan metode survei  dan  eksperimental  . Sampel  sampah  dapur  yang  terdiri  atas  sisa  makanan  dan  bahan organik  lainnya  diambil  dari  rumah  penduduk  yang  terletak  di  Kelurahan  Bancarkembar, Bobosan,  Grendeng,  Karangwangkal,  Pabuaran,  Purwanegara,  dan  Sumampir.  Tes screening menggunakan medium Starch Agar untuk mengetahui potensi amilolitik dari isolat jamur. Hasil menunjukkan  terdapat  delapan  isolat  jamur  yang  berpotensi  dalam  mendegradasi  amilum. Sebanyak  enam  isolat  jamur  yang  memiliki  indeks  amilolitik  terbaik  dengan  nilai  IE  ≥  1 teridentifikasi sebagai isolat Fusarium sp., Aspergilus sp., dan Penicillium sp. Selanjutnya untuk mengetahui  aktivitas  amilolitik  secara  kuantitatif  dilakukan  dengan  metode  DNS  melalui pengukuran kadar glukosa. Isolat jamur Fusarium sp. memiliki aktivitas degradasi amilum yang paling tinggi dengan rata-rata kadar glukosa dari medium Fusarium sp. sebanyak 3.568,63 ppm.
Kata kunci : amilolitik, degradasi, glukosa, jamur, sampah organik.

## PENDAHULUAN
Sampah organik merupakan jenis sampah yang sebagian besar tersusun oleh senyawa organik. Jenis sampah  ini  mudah  diuraikan  oleh  jasad  hidup khususnya mikroorganisme. Produksi sampah organik  kian  meningkat  seiring  dengan  peningkatan jumlah  penduduk.  Hasil  sensus  penduduk  menurut Badan  Pusat  Statistisk  (2020),  menunjukkan  bahwa jumlah  penduduk  Indonesia  pada  tahun  2020 sebanyak  270,20  juta  jiwa.  Jumlah  tersebut
meningkat sebanyak 32,56 juta jiwa dari hasil sensus penduduk pada tahun 2010. Menurut Nasution et al . (2017),  peningkatan  jumlah  penduduk  berkorelasi dengan  peningkatan  penumpukan  sampah  organik. Produksi  sampah  harian  di  perkotaan  rata-rata mencapai  0,5    kg  setiap  orang  dan  80%  terdiri  dari sampah organik. Jenis sampah organik yang banyak dihasilkan dalam skala rumah tangga antara lain sisa makanan  ,  sisa  sayuran,  sisa    kulit  buah,  dan  lain sebagainya.
Penumpukan  sampah  organik  faktanya  belum didukung dengan kemajuan teknologi dan infrastruktur  Tempat  Pembuangan  Akhir  (TPA). Sampah organik secara alami dapat terdegradasi oleh mikroorganisme dengan cara merombak sampah dari senyawa  komplek  menjadi  unsur  yang  lebih sederhana  Namun  proses  pengomposan  atau degradasi  ini  memiliki  waktu  yang  cukup  lama (Hikam et  al. ,  2021).  Masalah  tersebut  memerlukan solusi nyata untuk mengurangi sampah di masyarakat dengan  percepatan  proses  pengomposan.  Jamur merupakan salah satu mikroorganisme yang berpotensi  dalam  proses  pengomposan  sampah organik.
Inokulum mikroorganisme secara efektif mampu meningkatkan laju dekomposisi dan kandungan  nutrien  yang  dihasilkan.  Sampah  nasi, daging, sayuran, dan buah-buahan yang dikomposkan dengan bantuan mikroorganisme mengalami penurunan  rasio  karbon  dan  nitrogen  secara signifikan. Kandungan karbon yang menurun terjadi karena  adanya  proses  hidrolisis  menjadi  komponen yang  lebih  sederhana  lagi.  Proses  degradasi  sampah organik  yang  melibatkan  mikroorganisme  tentunya tidak  terlepas  dari  enzim-enzim  hidrolisis  seperti amilase (Fan et al ., 2018).
Menurut hasil penelitian Tantiado (2016), isolat jamur Aspergillus sp., Penicillum sp.  dan Altenaria sp.  berhasil  diisolasi  dari  limbah  sekam  padi  dan memiliki  kemampuan  degradasi  amilum.  Hal  ini mengindikasikan bahwa jamur tersebut mensekresikan enzim ekstraseluler. Efektifitas jamur dalam  mendegradasi  sampah  organik  telah  diuji dalam penelitian Pleissner et al . (2014). Jamur yang berpotensi  dalam  penanganan  sampah  organik, khususnya  sampah  makanan  contohnya A.  awamori dan A . oryzae .  Sampah  makanan  yang  difermentasi bersama kedua inokulum tersebut mampu mengurangi  jumlah  sampah  sebanyak  80-90%. Fermentasi  ini  melibatkan  proses  degradasi  sampah organik  menjadi  glukosa,  nitrogen  bebas,  dan  fosfat selama inkubasi 36-48 jam. Penambahan jamur pada proses  fermentasi  bersifat  cepat  dan  lebih  efisien daripada  pengomposan  sampah  tanpa  penambahan mikroorganisme . Penggunaan mikroorganisme memberikan peluang  terbukanya  wawasan  baru  melalui  sebuah penelitian  dalam  lingkup  degradasi  menggunakan jamur untuk menyelesaikan permasalahan penumpukan  sampah  organik,  sehingga  tujuan  dari penelitian  ini  yaitu  mengetahui  isolat  jamur pendegradasi  amilum  yang  diperoleh  dari  sampah organik dan potensi amilolitik isolat jamur tersebut.

## MATERI DAN METODE
Peralatan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini yaitu  cawan  petri,  gelas  piala,  gelas  ukur,  labu Erlenmeyer , object glass , cover glass , tabung reaksi, jarum  ose,  gunting,  batang drugalsky ,  bor  gabus, corong, aluminium  foil , cotton  plug ,  kertas  saring, mikropipet,  tip,  spatula,  bunsen, hotplate ,  autoklaf, mikroskop, spektrofotometer, timbangan digital, dan waterbath .  Bahan-bahan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  yaitu  sampel  sampah  dapur,  akuades, kloramfenikol, alkohol 70%, larutan Dinitrosalicylic acid (DNS),  glukosa  monohidrat,  medium Potato Dextrose  Agar (PDA)  instan, starch  soluble ,  agar murni, larutan iodin, Methylene blue , dan spirtus. Penelitian  ini  dilakukan  dengan  metode  survei untuk  isolasi  jamur  yang  berpotensi  amilolitik, selanjutnya  dilakukan  pengujian  dengan  metode eksperimental  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL). Perlakuan berupa 6 jenis isolat jamur dengan indeks amilolitik  tertinggi  yang  diinokulasikan  dalam medium Starch Broth dengan pengulangan sebanyak 4 kali.

## Pengambilan dan preparasi sampel
Sampel  sampah  dapur  diambil  dari  rumah penduduk yang terletak di Kelurahan Bancarkembar, Bobosan,  Grendeng,  Karangwangkal,  Pabuaran, Purwanegara,  dan  Sumampir.  Sampah  organik  yang diambil  berupa  sisa  potongan  sayur,  sisa  buah- buahan,  dan  sisa  makanan  lainnya  yang  sudah menjadi  sampah  rumah  tangga.  Sampah  tersebut dipotong  kecil-kecil,  dihancurkan,  dan  dibiarkan selama  lima  hari  untuk  menunggu proses degradasi. Masing-masing  sampel  sampah  dapur  ditimbang sebanyak 1 gram untuk selanjutnya dilakukan isolasi jamur amilolitik.
Pembuatan medium Starch Agar Sebanyak 10 gram starch soluble , 3 gram beef extract ,  dan  12  gram  agar  murni  dilarutkan  dalam akuades  hingga  volume  1  L.  Medium Starch  Agar dituang ke dalam labu Erlenmeyer dan ditutup dengan cotton  plug. Medium  tersebut  disterilisasi  dengan autoklaf  pada  suhu  121 0 C  selama  15  menit  pada tekanan 2 atm.
Pembuatan medium Starch Broth Sebanyak  10  gram starch  soluble dan  3  gram beef extract dilarutkan dalam akuades hingga volume 1  L.  Medium Starch  Broth dituang  ke  dalam  labu Erlenmeyer dan ditutup dengan cotton plug. Medium tersebut  disterilisasi  dengan  autoklaf  pada  suhu 121 0 C selama 15 menit pada tekanan 2 atm.

## Isolasi jamur
Sebanyak 8 mL medium PDA steril dituang ke dalam  cawan  petri  dan  ditunggu  hingga  memadat. Sebanyak  1  gram  sampel  dimasukkan  ke  dalam  99 mL  akuades  steril  lalu  dihomogenkan  untuk dilakukan  pengenceran  bertingkat  10 -2 .  Sebanyak  1
mL  hasil  pengenceran  10 -2 dimasukkan  ke  dalam  9 mL akuades dan dihomogenkan untuk  mendapatkan pengenceran  10 -3 .  Langkah  ketiga  diulangi  hingga pengenceran  10 -4 .  Hasil  pengenceran  10 -3 dan  10 -4 dilakukan plating sebanyak  0,1  mL  pada  medium PDA  secara  duplo.  Hasil plating diratakan  dengan batang drugalsky lalu ditutup dan dirapatkan dengan plastik  wrap.  Biakan  tersebut  diinkubasi  selama  4  x 24 jam pada suhu ruang.

## Pemurnian Isolat Jamur
Masing-masing  isolat  jamur  yang  memiliki karakteristik  berbeda  ditandai  dan  diberi  kode. Masing-masing  isolat  jamur  tersebut  diambil  1  ose lalu  diinokulasikan  ke  medium  PDA  yang  berbeda dan  diamati  setiap  hari  selama  7x24  jam.  Apabila terjadi  kontaminasi,  maka  dilakukan  pemurnian kembali sampai mendapatkan kultur murni.
Uji Kemampuan Hidrolisis Amilum (Fadhil et al ., 2020)
Kultur murni diinokulasikan ke dalam medium Starch Agar dan diinkubasi selama  3 x 24 jam pada suhu ruang. Hasil inkubasi diteteskan senyawa Iodin di  seluruh  media  dan  didiamkan  selama  20  menit. Zona  jernih  di  sekitar  koloni  diamati  dan  diukur indeks amilolitiknya dengan rumus :
𝐼𝐸 = 𝑅 𝑟
Keterangan :
IE : Indeks Amilolitik R : Diameter zona jernih (mm) R : Diameter koloni jamur (mm)

## Identifikasi Jamur Amilolitik
Isolat  jamur  dengan  indkes  amilolitik  tertinggi diidentifikasi secara morfologi. Karakter makromorfologi yang diamati yaitu bentuk dan warna koloni.  Pengamatan  karakter  mikromorfologi  jamur dilakukan dengan metode slide culture . Seperangkat kertas  saring, object  glass ,  dan cover  glass steril disiapkan  di  dalam  cawan  petri  steril.  Kertas  saring ditetesi  dengan  akuades  steril  untuk  memberikan suasana  lembab.  Medium  PDA  dipanaskan  hingga mencair.  Sebanyak  2  tetes  cairan  medium  PDA diteteskan  di  atas object  glass steril  dan  ditunggu hingga  memadat.  Sebanyak  1  ose  isolat  murni diinokulasikan  ke  medium  PDA  pada object  glass lalu  ditutup  dengan cover  glass. Preparat  tersebut selanjutnya diletakkan di atas kertas saring di dalam cawan  petri. Slide  culture diinkubasi  selama  3  x  24 jam lalu diamati karakter mikromorfologinya dengan mikroskop.  Karakter  mikromorfologi  yang  diamati antara  lain  sekat  hifa,  bentuk  dan  warna  spora. Karakter  makromorfologi  dan  mikromorfologi
dibandingkan  dengan  buku  identifikasi  menurut  Pitt &  Hocking  (2009),  Barnett  &  Hunter  (1998),  dan Campbel et al . (2013).

## Pembuatan  Persamaan  Regresi  Larutan  Standar Glukosa
Sebanyak  20  mg  glukosa  monohidrat  dilarutkan dalam 20 mL akuades untuk membentuk larutan stok glukosa dengan konsentrasi 1000 ppm. Larutan stok diencerkan dalam tabung reaksi hingga mendapatkan konsentrasi  20  ppm,  40  ppm,  60  ppm,  80  ppm,  dan 100 ppm. Sebanyak 0,25 mL larutan standar glukosa dilarutkan  dalam  0,5  mL  DNS.  Larutan  tersebut dipanaskan  di  dalam water  bath selama  5  menit dengan suhu 90 o C lalu didinginkan kembali. Larutan standar glukosa diencerkan dengan 5 mL akuades dan diukur  absorbansinya  dengan  spektrofotometer  UV- Vis  pada  panjang  gelombang  540  nm.  Hasil absorbansi dibuat kurva standar glukosa dan disusun persamaan regresinya.

## Pengukuran Kadar Glukosa (Saskiawan, 2015).
Sebanyak enam macam kultur isolat jamur yang memiliki  indeks  amilolitik  tertinggi  diinokulasikan dalam medium PDA dan diinkubasi selama 7x24 jam. Perlakuan yang diberikan berupa enam macam kultur murni diinokulasikan ke dalam 20 mL medium Starch Broth (SB)  dengan  ulangan  sebanyak  4  kali. Perlakuan  tersebut  diinkubasi  selama  10  hari  pada suhu  ruang.  Seluruh  perlakuan disaring  dan  diambil mediumnya. Medium hasil  saringan  diambil sebanyak  0,25  mL  dan  dilarutkan  dalam  0,5  mL pereaksi DNS. Larutan tersebut dipanaskan di dalam water  bath selama  5  menit  dengan  suhu  90 o C  lalu didinginkan  kembali.  Larutan  tersebut  diencerkan dengan  5  mL  akuades  dan  diukur  absorbansinya menggunakan spektrofotometer Uv-vis pada panjang gelombang  540  nm.  Nilai  absorbansi  dikonversi  ke dalam persamaan regresi larutan standar glukosa.

## Analisis Data
Data  Penelitian  berupa  kadar  glukosa  medium yang dianalisis dengan Analysis of varian (ANOVA) yaitu  dengan  uji  F  pada  taraf  signifikasi  95%, kemudian  dilanjutkan  dengan  uji  Beda  Nyata Terkecil (BNT) pada tingkat kepercayaan 95 %

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil isolasi dari tujuh titik pengambilan sampel sampah  dapur  diperoleh  14  isolat  jamur  Penapisan isolat jamur pendegradasi amilum dipilih berdasarkan keberadaan zona jernih di sekitar koloni jamur pada medium Starch  Agar setelah ditetesi  dengan  laturan iodin.  Rasio  aantara  diameter  koloni  jamur  dengan diamter  zona  jernih  didapatkan  indeks  amilolitik seperti yang terlihat pada tabel 1.

## Tabel 1. Hasil uji hidrolisis amilum
Titik Pengambilan Sampel Kode isolat jamur Rata-Rata Diameter Koloni (mm) Rata-Rata Diameter Zona Jernih (mm) Indeks Amilolitik Karangwangkal KR1 28,5 28,5 1,00 KR2 21,5 19,5 0,90 KR3 21,0 24,0 1,15 KR4 26,0 27,5 1,05 Bobosan BS1 15,5 15,0 0,96 BS2 34,5 34,5 1,00 Purwanegara PR1 7,5 0,0 0,00 PR2 5,0 0,0 0,00 PR3 5,0 0,0 0,00 Grendeng GR1 6,5 0,0 0,00 Bancarkembar BC1 36,0 36,0 1,00 BC2 29,5 29,5 1,00 Pabuwaran PB1 5,0 0,0 0,00 Sumampir SM1 10,0 0,0 0,00
Gambar 1. Hasil isolasi jamur pendegradasi sampah organik Keterangan : (I) Isolat jamur BC2; (II) Isolat Jamur KR1; (III) Isolat jamur BS2; (IV) Isolat jamur BC1; (V) Isolat jamur KR3; (VI) Isolat jamur KR4
Gambar 2. Grafik rata-rata kadar glukosa medium
22,38 28,00 29,88 34,25 173,63 3568,63 0,00 500,00 1000,00 1500,00 2000,00 2500,00 3000,00 3500,00 4000,00 BC2 BS2 BC1 KR1 KR3 KR4 R ata -R ata Kad ar Glu k o sa (p p m ) Isolat Jamur III I IV VI II V
Tabel  1  menunjukkan  delapan  isolat  memiliki indeks  amilolitik,  sedangkan  enam  isolat  lainnya tidak memiliki indeks amilolitik. Menurut Sukmawati et al . (2019), keberadaan zona jernih di sekitar koloni menunjukkan  isolat  tersebut  mampu  menghidrolisis amilum,  sedangkan  ketiadaan  zona  jernih  di  sekitar koloni  menunjukkan  isolat  tersebut  tidak  mampu menghidrolisis amilum. Zona jernih di sekitar koloni dapat  terbentuk  karena  enzim  amilase  yang disekresikan  isolat  jamur  mampu  memecah  amilum menjadi  komponen  disakarida  dan  monosakarida. Zona  bewarna  biru  kehitaman  seperti  yang  terlihat pada  Gambar  1  menunjukkan  reaksi  antara  reagen iodine dengan  kompleks  amilosa  yang  terkandung dalam amilum. Hal ini dapat terjadi karena tidak ada proses hidrolisis amilum oleh enzim.
Kategori  indeks  amilolitik  yang  berpotensi tinggi  ( high  potential )  dalam  memproduksi amilase memiliki nilai IE ≥ 1 (Khokhar et al ., 2011). Tabel 1 menunjukkan indeks amilolitik  isolat  KR1,  KR3,  KR4,  BS2, BC1,  dan  BC2  memiliki  nilai  IE  ≥  1, sehingga terindikasi memiliki potensi tinggi  dalam  mendegradasi  amilum. Isolat-isolat  tersebut  selanjutnya dikultur  dalam  medium Starch  Broth (SB) dan diukur absorbansi glukosa hasil hidrolisis amilum yang terkandung. Nilai absorbansi glukosa selanjutnya dikonversikan dengan persamaan regresi larutan  standar.  Kadar  glukosa  terukur  dapat  dilihat pada Gambar 2.
Berdasarkan uji  ANOVA terhadap enam isolat jamur  yang  berbeda  menunjukkan  perbedaan  isolat jamur  yang  berpengaruh  signifikan  terhadap  kadar glukosa  hasil hidrolisis amilum. Data  kadar glukosa selanjutnya dilakukan analisis uji lanjut Beda Nyata Terkecil  (BNT)  sehingga  diperoleh  perbedaan  yang nyata antar perlakuan seperti yang terlihat pada tabel 2.
Tabel  2. Hasil  uji  Beda  Nyata  Terkecil  (BNT)  dari kadar glukosa medium
Kode isolat jamur Rata-Rata kadar glukosa (ppm) BC2 22,38 ± 10,48 a BS2 28,00 ± 13,92 a BC1 29,88 ± 10,08 a KR1 34,25 ± 9,57 a KR3 173,63 ± 7,18 b KR4 3.568,63 ± 158,47 c
Keterangan  :  Nilai  yang  diikuti  oleh  huruf  yang  berbeda pada  kolom  menyatakan  berbeda  nyata;  (BC  = Bancarkembar; BS : Bobosan; KR : Karangwangkal).
Tabel  2  menunjukkan  kadar  glukosa  medium yang  terukur  menggunakan  komponen  pereaksi  3,5 asam  dinitrosalisilat  (DNS).  Reaksi  antara  medium dengan larutan DNS menimbulkan perubahan warna medium  menjadi  jingga  hingga  merah.  Menurut Ruswandi  et  al.  (2018),  komponen  DNS  mampu berikatan  dengan  gugus  aldehid  pada  D-glukosa membentuk  asam  3-amino-5-nitrosalisilat.  Proses tersebut  melibatkan  reaksi  redoks  yang  akan mengubah  larutan  menjadi  bewarna  jingga  sampai merah.  Semakin  tinggi  nilai  absorbansinya,  maka kadar glukosa dalam larutan semakin tinggi. Senyawa DNS dapat menyerap radiasi gelombang elektromegnetik pada panjang gelombang maksimum sebesar  550  nm,  sehingga  dapat  mendeteksi  kadar glukosa dengan metode spektrofotometri.
Tabel 2 juga menunjukkan bahwa medium dari isolat  jamur  KR4  memiliki  kadar  glukosa  tertinggi, diikuti  medium  dari  isolat  jamur  KR3  yang menempati  urutan  kedua.  Kadar  glukosa  terendah dimiliki oleh medium dari isolat BC2, BS2, BC1, dan KR1 yang tidak berbeda secara signifikan satu sama lain. Perbedaan tersebut disebabkan oleh karakteristik yang  khas  dari  masing-masing  jamur.  Menurut Mukrimin et al. (2021), isolat jamur dari genus yang berbeda berpeluang  memiliki  kemampuan degradasi amilum  yang  berbeda  pula.  Identifikasi  isolat  jamur menurut  Pitt  &  Hocking  (2009)  dapat  dilakukan melalui pengamatan morfologi baik secara makroskopis maupun mikroskopis.
Gambar 3. Hasil pengamatan morfologi isolat KR4 Keterangan  :  (I)  Makromorfologi  permukaan  koloni;  (II) Makromorologi  sebalik  koloni;  (III)  Mikromorfologi  hifa (X400); (IV) Mikromorfologi konidia yang dilihat dengan mikroskop  cahaya  dan  pewarnaan  Metylene  blue  (X400). (makn, makrokonidia; mikn, mikrokonidia; hf, hifa).
makn mikn I hf III I II IV III
Gambar  3  menunjukkan  isolat  KR4  dengan permukaan dan sebalik koloni bewarna putih berpadu merah  muda  dengan  miselium  tumbuh  lebat. Karakteristik  mikroskopis  isolat  KR4  menunjukkan makrokonidia  melengkung  pada  bagian  dorsalnya dan  mikrokonidia  berbentuk  oval.  Karakter  tersebut menunjukkan  isolat  KR4  teridentifikasi  sebagai Fusarium sp. Menurut Pitt & Hocking (2009), koloni Fusarium umumnya  tumbuh  cepat.  Karakter makroskopis  Fusarium  terdiri  dari  miselium  aerial yang terlihat pucat atau bewarna merah muda, merah, ungu,  atau  cokelat.  Karakter  mikroskopis  yang menentukan genus Fusarium yaitu bentuk makrokonidia dan mikrokonidia. Adapun karakteristik  konidia  menurut  Leslie  &  Summerell (2006)  yaitu  makrokonidia  dapat  berbentuk  tipis seperti  jarum  atau  melengkung  pada  bagian dorsalnya,  sedangkan  mikrokonidia  dapat  bervariasi antara oval , reniform , pyriform , napiform , globose , atau fusiform .
Gambar 4. Hasil pengamatan morfologi isolat KR3 Keterangan  :  (I)  Makromorfologi  permukaan  koloni;  (II) Makromorologi  sebalik  koloni;  (III)  Mikromorfologi miselium  yang  dilihat  dengan  mikroskop  cahaya  (X400). (pc, penicillus; kfr, konidiofor; ph, phialide; kn, konidia).
Gambar  4  menunjukkan  isolat  KR3  dengan permukaan  dan  sebalik  koloni  bewarna  putih. Karakteristik mikroskopisnya terlihat struktur penicillus yang bercabang membawa phialide atau sel konidiogenus.  Konidia  yang  dihasilkan phialide terlihat berbentuk bulat dan tersebar ke area sekitar. Karakter ini merupakan ciri khas dari Penicillium sp. Karakterisasi tersebut sesuai dengan hasil identifikasi Pitt  &  Hocking  (2009)  yang  menyatakan  bahwa genus Penicillium sangat identik dengan keberadaan penicillus .  Struktur  ini  terdiri  dari  beberapa  cabang phialide ( conidiogenous cell ). Jumlah titik percabangan  pada penicillu s  sangat  menentukan identifikasi  spesies  dari  genus  Penicillium.  Jumlah percabangan  dapat  bervariasi  dari  satu,  dua,  tiga, maupun empat titik perabangan pada penicillus.
Gambar 5. Hasil pengamatan morfologi isolat BC2 Keterangan  :  (I)  Makromorfologi  permukaan  koloni;  (I) Makromorfologi sebalik koloni;  (III) Mikromorfologi yang dilihat dengan mikroskop cahaya (X400). (kfr, konidiofor; ves, vesikel; kn, konidia).
Gambar  5  menunjukkan  isolat  BC2  memiliki permukaan  koloni  yang  bewarna  hitam  dan  putih, sedangkan  sebalik  koloninya  bewarna  kuning. Adapun  karakteristik  mikroskopisnya  menunjukkan konidiofor yang menyokong vesikel. Struktur vesikel bulat  membesar  dan  membawa  konidia  yang berbentuk bulat. Karakteristik tersebut menunjukkan isolat BC2 teridentifikasi sebagai Aspergillus sp. Hal ini  sesuai  dengan  karakter  identifikasi Aspergillus menurut  Pit  &  Hocking  (2009)  dengan  ciri-ciri konidiofor yang kuat dan dinding yang tebal. Ujung konidiofor  membesar  dan  membentuk  vesikel  yang bulat.  Struktur  vesikel  ini  membawa philides di permukaannya. Phialide adalah  sel  konidiogenus yang memproduksi konidia
Gambar 6. Hasil pengamatan morfologi isolat KR1 Keterangan  :  (I)  Makromorfologi  permukaan  koloni;  (II) Makromorologi sebalik koloni; (III) Mikromorfologi yang dilihat dengan mikroskop cahaya (X400). (kfr, konidiofor; ves, vesikel; kn, konidia).
II II III kn pc kfr phl I III ves kn kfr I II I I II kn III ves kn kfr
Gambar  6  menunjukkan  isolat  KR1  yang memiliki  permukaan  koloni  yang  bewarna  hitam dengan perpaduan warna putih pada bagian tepinya. Sebalik  koloni  isolat  KR1  bewarna  kuning. Konidiofor  lurus  dengan  ujungnya  yang  membesar. Rantai  basipetal  terlihat  jelas  dengan  membawa konidia  bewarna  hitam.  Karakteristik  tersebut menunjukkan  bahwa  isolat  KR1  teridentifikasi sebagai Aspergillus sp.  Menurut  Barnett  &  Hunter (1998),  isolat  dari  genus  Aspergillus  memiliki konidiofor  yang  tegak  lurus,  sederhana,  dan membengkak  pada  ujungnya  untuk  menyokong  sel konidiogenus. Bentuk konidia pada genus Aspergillus berbentuk bulat.
Gambar 7. Hasil pengamatan morfologi isolat BS2 Keterangan  :  (I)  Makromorfologi  permukaan  koloni;  (II) Makromorologi sebalik koloni; (IV) Mikromorfologi yang dilihat dengan mikroskop cahaya (X400). (kfr, konidiofor; ves, vesikel; kn, konidia).
Gambar  7  menunjukkan  isolat  BS2  dengan karakteristik  yang  tidak  jauh  berbeda  dari  isolat sebelumnya. Isolat BS2  memiliki permukaan  koloni yang  bewarna  cokelat  dan  sebalik  koloni  yang bewarna putih. Struktur konidiofor terlihat kokoh dan vesikel  yang  bulat  dan  membesar.  Struktur  vesikel membawa konidia yang tersebar di sekitarnya. Oleh karena  itu  isolat  BS2  juga  teridentifikasi  sebagai Aspergillus sp.
Sebagaimana  Pit  &  Hocking  (2009),  yang menjelaskan bahwa ciri khas dari genus Aspergillus yaitu memiliki pembesaran konidiofor yang membentuk  vesikel.  Sel  konidiogenusnya  tumbuh serentak  dan  memproduksi  rantai  konidia  dalam jumlah  banyak.  Menurut  Campbell et  al .  (2013), konidia  Aspergillus  terbentuk  melalui  proses enteroblastik  konidiogenesis.  Bagian  luar  dari dinding  sel  konidiogenus  akan  membuka  dan mengeluarkan konidia  membentuk rantai  yang tidak bercabang. Spora yang baru terbentuk dari proses ini terletetak pada bagian basal rantai konidia.
Gambar 8. Hasil Pengamatan Morfologi Isolat BC1 Keterangan  :  (I)  Makromorfologi  permukaan  koloni;  (II) Makromorologi  sebalik  koloni;  (III)  Mikromorfologi miselium  yang  dilihat  dengan  mikroskop  cahaya  (X40); (IV)  Mikromorfologi  vesikel  yang  dilihat  dengan mikroskop  cahaya  (X400).  (kfr,  konidiofor;  ves,  vesikel; kn, konidia).
Gambar  8.  menunjukkan  isolat  BC1  dengan permukaan koloni memiliki perpaduan warna hitam, kuning  dan  putih,  sedangkan  sebalik  koloninya bewarna  kuning.Struktur  konidiofor  menyokong vesikel yang bulat membesar. Struktur konidia yang terlepas  dari  rantai  basipetal  juga  terlihat  jelas berbentuk bulat. Sama seperti isolat-isolat sebelumnya,  isolat  BC1  juga  teridentiikasi  sebagai Aspergillus sp. Menurut Pit & Hocking (2009), isolat dari  genus  Aspergillus  memiliki  konidiofor  yang kokoh  dengan  ujung  yang  membesar  membentuk vesikel.  Konidiofor  dapat  terbentuk  di  atas  sel  kaki yang  terletak  di  antara  hifa  fertil.  Aspergillus  dapat tetap  memproduksi  spora  walaupun  saat  kondisi resisten  sekalipun,  sehingga  isolat  ini  memiliki diversitas  yang  tinggi  dan  mendominasi  makanan busuk pada daerah tropis.
Hasil identifikasi isolat jamur KR1, KR3, KR4, BS2,  BC1,  dan  BC2  mendukung  interpretasi  data pengukuran  kadar  glukosa  yang  terkandung  dalam medium.  Kadar  glukosa  tertinggi  dimiliki  oleh medium  KR4  yang  teridentifikasi  sebagai Fusarium sp.  Kadar  glukosa  medium  isolat  KR3  yang menempati urutan kedua teridentifikasi sebagai isolat Penicillium sp. Sebanyak empat isolat lainnya dengan kadar  glukosa  medium  terendah  teridentifikasi sebagai Aspergillus sp.  Menurut  Mukrimin et  al . (2021),  aktivitas  degradasi  amilum  isolat  jamur Fusarium sp.  lebih  tinggi  daripada  isolat  jamur Aspergillus sp.  dan Penicillium sp.  Fusarium merupakan salah satu genus jamur yang terdistribusi secara  luas.  Sejalan  dengan  penelitian  Nwagu et  al .
III kfr ves III IV ves kn I II II I
(2011), Produksi amilase Fusarium sp. optimal pada fase  pertumbuhan  stationer.  Enzim  amilase  dari Fusarium sp. relatif termostabil dan mampu menahan inaktivasi termal.
Degradasi  amilum  menjadi  gula  yang  lebih sederhana  dipengaruhi  oleh  ketersediaan  gula, kondisi kultur, dan adaptasi jamur pada substratnya. Kemampuan  tersebut  dapat  terindikasi  dengan peningkatan  biomassa  jamur  dan  penurunan  kadar karbohidrat  di  lingkungan  sekitar.  Gula  hasil hidrolisis  selain  digunakan  untuk  pertumbuhan  sel jamur  juga  berperan  penting  dalam  proses metabolisme.  Gula  tersebut  akan  diserap  oleh  sel jamur  melalui  membran  sel,  selanjutnya  mengalami proses  glikolisis,  siklus  Krebs,  dan  rantai  transpor elektron untuk  menghasilkan  energi (Mchunu et al ., 2013)

## SIMPULAN
Isolat  jamur  pendegradasi  amilum  yang diperolah dari sampah organik teridentifikasi sebagai isolat Aspergillus sp., Penicillium sp., dan Fusarium sp.  Potensi  amilolitik  tertinggi  dimiliki  oleh  jamur Fusarium sp.  dengan  kadar  glukosa  hasil  hidrolisis amilum sebanyak 3.568,63 ppm.

## DAFTAR REFERENSI
Badan  Pusat  Statistik,  2020. Badan  Pusat  Statistik.
[Online] Available at: https://www.bps.go.id/pressrelease/2021/01 /21/1854/hasil-sensus-penduduk-2020.html
[Accessed 25 Januari 2020].
Barnett,  H.L.  &  Hunter,  B.B.,  1998. Illustrated Genera  of  Imperfect  Fungi. 4th  ed.  Santa Paula: Amer Pytopathological Society Press.
Campbell,  C.K.,  Johnson,  E.M.  &  Warnock,  D.W., 2013. Identification  of  Pathogenic  Fungi. 2nd ed. Chichester: Blackwell Publishing.
Fadhil,  M.I.,  Oetari,  A.  &  Sjamsuridzal,  W.,  2020. Starch  Degrading  Ability  of  Rhizopus aygosporus UICC 539 at Various Temperatures. in AIP Confereence
Proceedings, AIP Publishing.
Fan, Y.V. Lee, C.T. Klemes, J.J. Chua, L. S. Sarmidi, M.R.  &  Leow,  C.  W.,  2018.  Evaluation  of Effective  Microorganisms  on  Home  Scale Organic  Waste. Journal  Enviromental Management, Volume 216, pp. 41-48.
Hikam, A.R., Yulianti, D.M. & Ginanjar, R.R., 2021. Diversitas dan Potensi Jamur Lignolitik Asal Seresah Daun. Al-Hayat: Journal of Biology and Applied Biology , 4(1), pp.33-42.
Khokhar,  I.,  Mukhtar,  I.  &  Mushtaq,  S.,  2011. Isolation  and  Screening  of  Amylolytic Filamentous  Fungi. Journal  Application
Environtment Management, 15(1), pp. 203- 206.
Leslie, J.F. & Summerel, B.A., 2006. The Fusarium Laboratory  Manual. 1st  ed.  Oxford:
Blackwell Publising.
Madigan, M.T., Martinko, J.M, Bender, K.S., Bukley, D.H.,  Stahl,  D.A.,  2014. Brock  Biology  of Miroorganisms. 14th ed. s.l.:Pearson.
Mchunu,  N.P.,  Permaul,  K.,  Alam,  M.  &  Singh,  S., 2013.  Global  carbon  Utilization  Profiles  of Wild-  Type,  Mutant,  Transformant  Strains of Hypocrea jecorina Applied and Environmantal  Microbiology. Advance  in Bioscience and Biotecnology, Volume 4, pp. 24-32. Nasution,  P.,  Periadnadi  &  Nurmiati,  2017. Kecepatan Pertumbuhan Kapang ( Trichoderma  harzianum Rifai  A1300- F006)  dan  Aktivitas  Selulase  dalam Penanganan Sampah Selulosa. Metamorfosa Journal of Biological Sciences, 4(1), pp. 35- 40.
Nwagu,  T.N.  &  Okolo,  B.N.,  2011.  Extracellular Amylase  Production  of  a  Thermotolerant Fusarium sp. Isolated from Eastern Nigerian Soil. Brazilian  Archives  of  Biology  and Technology, 54(4), pp. 649-658.
Ogbonna,  A.I.,  Onwuliri,  F.C.  &  Ogbonna,  C.I.C., 2015.  Growth  Response  and  Amylolytic Activity of two Aspergillus species Isolated from  Artemisia  annua  L.  Plantation  Soils. Journal  of  Academia  and  Industrial Research (JAIR), 3(10), pp. 456-461.
Pitt,  J.I.  &  Hocking,  A.D.,  2009. Fungi  and  Food Spoilage. 2nd ed. London: Blackie
Academic and and Professional.
Pleissner,  D.,  Kwan,  T.H.  &  Lin,  C.S.K.,  2014.
Fungal Hydrolysis in Submerged Fermentation for Food Waste Treatment and Fermentation Feedstock Preparation. Bioresource  Tecnology, Volume  158,  pp.
48-54.
Reddy,  C.A.  &  Abouzied,  M.M.,  1986.  Glucose Feedback Inhibition of Amylase Activity in
Aspergillus sp.  and  Release  of  This
Inhibition when Cocultured with Saccharomyes cerevisiae . Enzyme
Mirobiome Technology, Volume 8, pp. 659- 664.
Ruswandi, Oktavia, B. & Azhar, M., 2018. Penentuan Kadar  Fruktosa  Hasil  Hidrolisis  Inulin dengan DNS sebagai Pengoksidasi. Eksakta,
19(1), pp. 14-23.
Saskiawan, I., 2015. Penambahan Inokulan Mikroba Selulolitik  pada  Pengomposan  Jerami  Padi untuk  Media  Tanam  Jamur  Tiram  Putih
(Pleurotus ostreatus). Jurnal Biologi
Indonesia, 11(2), pp. 187-193.
Sukmawati, D., Arman, Z., Sondana, G.A., Fikriyah, N. N., Hasanah, R., Afifah, Z.N., Balqis, M., Enhasy,  H.E.,  Husna,  S.N.A.,  Rahayu,  S., Kurniati,  T.H.,  Puspitaningrum,  R.,  2019. Potential Amylase Producing Yeast Isolated from  Indigenous  Fermented  Beverages Originating  from  Bali,  Indonesia. s.l.,  IOP Publishing.
Tantiado,  R.G.,  2016.  Isolation,  Screening,  and Identification  of  Amylase-Producing  Fungi from  Selected  Rice  Mills  for  Starch Degradation. WVSU Research Journal, 5(2), pp. 1-20