Abstrak — Pada  tahun  2016,  kebutuhan  Agar  dunia  mencapai 550.000  ton  dan  terus  meningkat  tiap  tahunnya.  Peningkatan kebutuhan tersebut  harus diiringi dengan  peningkatan  produksi rumput  laut. Gracilaria  verrucosa merupakan  rumput  laut penghasil  Agar  dan  banyak  dibudidayakan  di  Indonesia.  Akan tetapi,  produksi  rumput  laut G.  verrucosa masih  rendah disebabkan  oleh  laju  pertumbuhan  yang  lambat.  Selain  itu, penyediaan  bibit  unggul  juga  masih  sulit  dilakukan.  Teknik kultur in  vitro melalui  penambahan  ZPT  auksin  dan  sitokinin diketahui dapat  meningkatkan  laju  pertumbuhan  eksplan.  Oleh karena  itu,  penelitian  bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh kombinasi  ZPT  IAA  dan  BAP  terhadap  laju  pertumbuhan rumput  laut G.  verrucosa secara in  vitro .  Penelitian  dilakukan dengan menumbuhkan eksplan interkalar G. verrucosa ke dalam medium  PES  dengan  penambahan  kombinasi  IAA  dan  BAP  (0; 0,1; 0,3; 0,5 mg/l) selama 30 hari. Hasil penelitian  menunjukkan kombinasi IAA dan BAP berpengaruh terhadap laju pertumbuhan eksplan rumput  laut G.  verrucosa . Perlakuan IAA 0  mg/l  dan  BAP  0,5  mg/l  menunjukkan  pengaruh  tertinggi terhadap laju pertumbuhan yakni sebesar 0,42% per hari.
Kata  Kunci — BAP, Gracilaria  verrucosa ,  IAA, In  vitro ,  Laju Pertumbuhan.

## I. PENDAHULUAN
UMPUT laut Gracilaria verrucosa merupakan salah satu jenis  alga  merah  (Rhodophyta)  penghasil  agar  (agarofit) dengan  kandungan  agar  mencapai  47,34%  [1].  Agar  banyak digunakan  sebagai  bahan  pengental  dan  pengemulsi  dalam industri  makanan,  obat-obatan,  kosmetik,  kertas,  tekstil, minyak bumi, dan industri bioteknologi [2][3].
Berdasarkan  data  KKP  [4],  kebutuhan  agar  dunia  pada tahun 2016 mencapai 550.000 ton dan terus  meningkat setiap tahunnya.  Seiring  dengan  meningkatnya  kebutuhan  Agar, peningkatan  produksi  rumput  laut G.  verrucosa juga  perlu ditingkatkan.  Akan  tetapi,  produksi  rumput  laut G.  verrucosa melalui  budidaya  tambak  masih  banyak  mengalami  kendala yang berakibat pada menurunnya produksi. Hal ini dibuktikan pada  rendahnya  produksi  rumput  laut G.  verrucosa di Kecamatan  Jabon,  Kabupaten  Sidoarjo  yang  hanya  mencapai 1.344 ton rumput laut kering pada tahun 2016 [5].
Salah  satu  kendala  yang  dihadapi  adalah  laju  pertumbuhan rumput  laut  yang  lambat  sehingga  berakibat  pada  rendahnya produksi  rumput  laut  [6].  Selain  itu,  penyediaan  bibit  unggul juga  masih  terbatas  pada  teknik  konvensional  melalui perbanyakan  vegetatif.  Padahal  penggunaan  teknik  tersebut
secara berulang diketahui dapat menurunkan laju pertumbuhan [7][8].
Perkembangan  bioteknologi  seperti  kultur in  vitro telah dikembangkan  untuk  meningkatkan  produksi  rumput  laut G. verrucosa . Proses kultur in vitro dapat dipengaruhi oleh faktor endogen  dan  eksogen.  Faktor  endogen  meliputi  karakteristik eksplan  seperti  umur,  sumber,  tahap  perkembangan  dan fisiologi, sedangkan faktor eksogen meliputi salinitas, iradiasi, fotoperiodisasi, temperatur, pH dan komposisi media [9]. Laju pertumbuhan  tinggi  dapat  dicapai  melalui  pengamatan  dan pengendalian  faktor  abiotik  yang  diketahui  berpengaruh terhadap pertumbuhan spesies [10]. Sebagai hasil, penyediaan bibit unggul dalam jumlah dapat diproduksi dalam waktu yang singkat  sehingga  mendukung  produksi  rumput  laut  secara berkelanjutan  yang  bertujuan  untuk  memenuhi  kebutuhan Agar [8].
Yong  et  al.  [11]  melaporkan  bahwa  penggunaan  zat pengatur  tumbuh  (ZPT) Indole-3-acetic  acid (IAA)  dan 6- Benzylaminopurine (BAP) pada kultur rumput laut Kappaphycus alvarezii secara in vitro dapat meningkatkan laju pertumbuhan  eksplan  secara  optimum  yakni  sebesar  4%  per hari  sedangkan  pada  kultur  yang  tidak  ditambahkan  ZPT memiliki  laju  pertumbuhan  lebih  rendah  yakni  sebesar  1,8% per  hari.  Hal  tersebut  menunjukkan  bahwa  penggunaan  ZPT sebagai  faktor  eksogen  berperan  dalam  meningkatkan  laju pertumbuhan.
Oleh  karena  itu,  penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui pengaruh  kombinasi  ZPT  IAA  dan  BAP  terhadap  laju pertumbuhan eksplan rumput laut G. verrucosa secara in vitro .

## II. METODE PENELITIAN

## A. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Januari 2017 sampai Mei  2017  di  Laboratorium  Biosains  dan  Teknologi Tumbuhan,  Departemen  Biologi,  Fakultas  Matematika  dan Ilmu  Pengetahuan  Alam,  Institut  Teknologi  Sepuluh Nopember.

## B. Pengambilan Sampel
Pengambilan  sampel  rumput  laut  menggunakan  metode semi-basah  berdasarkan  penelitian  Sulistiani  dan  Yani  [12] dengan modifikasi. Rumput laut diambil dari tambak budidaya di Desa Kupang, Kecamatan Jabon, Kabupaten Sidoarjo, Jawa

## Laju Pertumbuhan Eksplan Rumput Laut ( Gracilaria verrucosa (Hudson) Papenfuss) secara in vitro
Muhammad Evan Nurrahmawan dan Nurul Jadid Departemen Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS)
e-mail : nuruljadid@bio.its.ac.id
R
Timur  (7°31'21.3"S  112°49'34.0"E).  Sampel  dibersihkan terlebih  dahulu  dari  kotoran  dan  organisme  yang  menempel (epifit). Setelah bersih, sampel dimasukkan ke dalam cool box dalam  keadaan  basah  dan  disusun  tidak  rapat  kemudian dilapisi  dengan  koran  pada  bagian  atas.  Setelah  itu, cool  box ditutup rapat dan siap untuk dibawa ke laboratorium..

## C. Sterilisasi Eksplan
Sterilisasi  eksplan  bertujuan  untuk  mendapatkan  eksplan steril  yang  bersih  dari  kontaminan.  Perlakuan  sterilisasi eksplan  diakukan  berdasarkan  penelitian  Reddy et  al .  [13] dengan modifikasi. Sampel hasil aklimatisasi dibawa ke dalam LAF  dan  dipotong  bagian  thallus  apikal  dengan  panjang  ±5 cm  dan  dibilas  dengan  air  laut  steril  sebanyak  2  kali.  Setelah itu,  eksplan  direndam  ke  dalam  0,1%  (w/v)  larutan  deterjen (Rinso)  selama  10  menit.  Kemudian  eksplan  direndam  ke dalam  1%  (v/v)  larutan povidone  iodine (Betadine)  selama  1 menit.  Pada  tiap  perlakuan,  eksplan  dibilas  dengan  air  laut steril sebanyak 2 kali. Selanjutnya, eksplan direndam ke dalam 3%  (v/v)  larutan  medium  PES  Antibiotik  selama  48  jam. Kultur disimpan diatas rotary shaker dengan temperatur ruang 22-25 o C,  intensitas  cahaya  1500  lux,  dan  penyinaran terang:gelap  (12:12  jam).  Setelah  itu,  eksplan  dibilas  dengan air  laut  steril  sebanyak  2  kali  dan  dikeringkan  dengan  tisu steril.  Eksplan  steril  telah  siap  untuk  digunakan  untuk  tahap selanjutnya.

## D. Inokulasi Eksplan
Inokulasi  eksplan  dilakukan  berdasarkan  penelitian Sulistiani  dan  Yani  [12]  dengan  modifikasi.  Eksplan  steril dipotong  dengan  panjang  ±0,5  cm  (berat  ±0,5  mg)  di  dalam LAF. Kemudian potongan eksplan dimasukkan ke dalam gelas kultur berisi 2% (v/v) medium PES padat. Setiap botol berisi 5 eksplan  yang  disusun  melingkar.  Setelah  itu,  gelas  kultur ditutup kembali dengan plastik HDPE dan disimpan dalam rak kultur  selama  4  minggu  dengan  temperatur  ruangan  22-25 o C, intensitas  cahaya  1500  lux,  dan  penyinaran  terang:gelap (12:12 jam).

## E. Pengamatan
Pengamatan  laju  pertumbuhan  eksplan  dilakukan  dengan menggunakan rumus sebagai berikut:
GR = [LN(Wt/W0)/t] × 100%         (1)
Keterangan GR  : Laju pertumbuhan eksplan (%) Wt  : Berat akhir eksplan (mg) Wo  : Berat awal eksplan (mg) t    : Lamanya kultur (hari)
Pengamatan  induksi  tunas  dilakukan  dengan  menghitung persentase  eksplan  bertunas  menggunakan  rumus  sebagai berikut:
C = 𝐸𝑡 𝐸0 𝑥 (2)
Keterangan C   : Laju persentase eksplan bertunas (%) Et   : Total jumlah eksplan akhir yang bertunas
Eo  : Total jumlah eksplan awal tanam Sedangkan pengamatan multiplikasi tunas dilakukan dengan menghitung jumlah tunas per eksplan yang muncul setelah 30 hari inokulasi.

## F. Rancangan Penelitian dan Analisis Data
Penelitian disusun menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL)  faktorial  dengan  dua  faktor.  Faktor  pertama  adalah IAA  dengan  4  level  konsentrasi  (0;  0,1;  0,3;  0,5  mg/l) sedangkan  faktor  kedua  adalah  BAP  dengan  4  level konsentrasi  (0;  0,1;  0,3;  0,5  mg/l).  Penelitian  terdiri  dari  16 perlakuan  dengan  5  kali  ulangan.  Parameter  uji  yang dilakukan adalah laju pertumbuhan eksplan.
Data  pengamatan  laju  pertumbuhan  eksplan  dianalisis menggunakan  uji  ANOVA Two  Way menggunakan  program Minitab  16  untuk  mengetahui  pengaruh  kombinasi  IAA  dan BAP  terhadap  laju  pertumbuhan  eksplan  rumput  laut G. verrucosa . Analisis dilanjutkan dengan uji Tukey dengan taraf signifikan 5% untuk mengetahui perbandingan antar perlakuan IAA dan BAP.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## A. Laju Pertumbuhan Eksplan
Pengamatan  laju  pertumbuhan  bertujuan  untuk  mengetahui adanya pertumbuhan pada eksplan melalui pengukuran selisih berat awal dan berat akhir selama dikultur dalam medium PES dengan penambahan kombinasi IAA dan BAP. Pada penelitian ini,  kombinasi  IAA  dan  BAP  berpengaruh  terhadap  laju pertumbuhan eksplan.
Pada  pengamatan  laju  pertumbuhan,  perlakuan  BAP  tanpa penambahan  IAA  menunjukkan  respon  peningkatan  laju pertumbuhan seiring dengan tingginya rasio BAP. Akan tetapi, pada  perlakuan  IAA  tanpa  penambahan  BAP  dan  kombinasi keduanya  menunjukkan  variasi  respon  peningkatan  dan penurunan  laju  pertumbuhan.  Kombinasi  IAA  dan  BAP dengan  rasio  yang  sama  menunjukkan  penurunan  laju pertumbuhan  seiring  dengan  meningkatnya  rasio  perlakuan kedua  ZPT tersebut. Berdasarkan hasil  uji  ANOVA,  interaksi IAA  dan  BAP  berpengaruh  signifikan  terhadap  laju pertumbuhan (P<0,05).
Berdasarkan  hasil  pengamatan  laju  pertumbuhan  eksplan (Tabel  4.1),  perlakuan  IAA  0  mg/l  dan  BAP  0,5  mg/l menunjukkan  respon  tertinggi  terhadap  laju  pertumbuhan eksplan  yakni  sebesar  0,42  %  per  hari  dan  tidak  berbeda signifikan dengan perlakuan lain yang diikuti oleh huruf yang sama.  Sedangkan  perlakuan  IAA  0,5  mg/l  dan  BAP  0,5  mg/l menunjukkan respon terendah yakni sebesar 0,1% per hari dan tidak  berbeda  signifikan  dengan  perlakuan  lain  yang  diikuti dengan huruf yang sama. Pada perlakuan IAA 0 mg/l dan BAP 0  mg/l  juga  menunjukkan  respon  laju  pertumbuhan  yakni sebesar 0,17%. Hal ini diduga karena adanya hormon endogen yang  berperan  dalam  meningkatkan  pertumbuhan.  Beberapa tipe  hormon  tanaman  secara  alami  memang  terdapat  dalam jaringan  rumput  laut  baik  auksin  dan  sitokinin  (endogenus auksin/sitokinin),  seperti  IAA,  ABA  ( Abscisic  acid ),  PAA ( Phenyl  acetic  acid ),  iP  ( isopentenyladenin ),  and  CZ  ( cis- zeatin ) [14][15].
Tabel 1.
Pengaruh kombinasi IAA dan BAP terhadap laju pertumbuhan eksplan
rumput laut G. verrucosa BAP (mg/l) IAA (mg/l) 0 0,1 0,3 0,5 0 0,17b 0,23ab 0,32ab 0,42a 0,1 0,21ab 0,30ab 0,23ab 0,30ab 0,3 0,15b 0,22ab 0,24ab 0,16ab 0,5 0,23ab 0,13b 0,16b 0,10b
Keterangan:  Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  tidak  berbeda  signifikan menurut uji Tukey dengan taraf signifikan 5%.
Gambar 1. Grafik pengaruh IAA dan BAP terhadap laju pertumbuhan eksplan rumput laut G. verruocsa .
Penelitian Yokoya et al. [16] menunjukkan pengaruh auksin dan  sitokinin  pada  laju  pertumbuhan  rumput  laut Gracilaria tenuifrons berkaitan dengan fungsi auksin dan sitokinin dalam proses  pembelahan  sel,  elongasi  dan  diferensiasi.  Auksin berperan  dalam  mengatur  pertumbuhan  dan  pemanjangan  sel, sedangkan  sitokinin  berperan  dalam  pembelahan  sel  dan morfogenesis  [17].  Penelitian  lainnya  melaporkan  bahwa kombinasi  IAA  1  mg/l  dan  BAP  2,5  mg/l  meningkatkan  laju pertumbuhan  eksplan  rumput  laut Kappaphycus  alvarezii secara optimum yakni sebesar 4% per hari [18].
Pertumbuhan  pada  tingkat  seluler  didefinisikan  sebagai kenaikan  jumah  material  hidup  yang  mengakibatkan peningkatan  ukuran  sel  dan  selanjutnya  akan  mempengaruhi pembelahan  sel  [19].  Hubungan  antara  pertumbuhan (peningkatan  biomasa  tiap  sel)  dan  produksi  sel  baru  (siklus sel)  sangatlah  penting  dalam  perkembangan  organisme multiselular  [20][21]  dan  [22].  Pertumbuhan  dan  siklus  sel dikendalikan  oleh  perubahan  ekspresi  gen cyclin-dependent kinase (CDK) dan cyclin akibat pengaruh auksin dan sitokinin. Auksin  berperan  dalam  proses  perubahan  ekspresi  gen meliputi  peningkatan  aktivitas  dan  jumlah  RNA  polimerase, level  RNA  ribosom,  level  mRNA  protein  ribosom  dan polyribosom [23]. Sedangkan sitokinin berperan dalam proses sintesis protein spesifik selama tahap siklus sel [24].
Dalam  siklus  sel,  auksin  berperan  dalam  menginduksi ekspresi  CDK  [25][26]  dan  [27],  menghambat  inhibitor  CDK (KRP1/KRP2)  [28][29],  meningkatkan  stabilitas  protein E2FA/B  [30],  menstimulus  degradasi  SKP2A,  menginduksi
ekspresi telomerase pada fase S melalui peningkatan aktivitas telomerase  selama  replikasi  [31].  Sedangkan  sitokinin berperan  dalam  menginduksi  ekspresi  gen  cdc2  pada  fase transisi  G2-M  [25],  dan  menginduksi  ekspresi  CycD3  pada fase G1-S [32].

## IV. KESIMPULAN
Dalam  penelitian  ini,  pemberian  kombinasi  IAA  dan  BAP berpengaruh  terhadap  induksi  dan  multiplikasi  tunas  eksplan rumput  laut G.  verrucosa secara in  vitro .  Perlakuan  dengan hasil tertinggi terdapat pada penambahan IAA 0 mg/l dan BAP 0,5 mg/l dengan laju pertumbuhan sebesar 0,42 % per hari.
Saran  untuk  penelitian  selanjutnya  yakni  dilakukan penelitian  tentang  optimasi  kondisi  faktor  eksogen  (salinitas, komposisi  medium,  iradiasi,  fotoperiodisasi,  pH,  dan temperatur) pada kultur in vitro rumput laut G. verrucosa .

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  mengucapkan  terimakasih  kepada  Kelompok  Tani Tunas  Hijau  Kupang  Sidoarjo  dan  Laboratorium  Kultur Jaringan Biotrop Bogor yang  telah  memberikan dana bantuan penelitian,  Laboratorium  Biosains  dan  Teknologi  Tumbuhan Departemen  Biologi,  FMIPA  ITS  yang  telah  menyediakan fasilitas  laboratorium  penelitian  dan  Dr.  Nurul  Jadid,  M.Sc yang telah membimbing penulis dalam penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]  A.  Kadi  and  W.  S.  Atmadja, “ Rumput  Laut  (Algae)  Jenis,  Reproduksi, Produksi, Budidaya dan Pasca Panen, ” Jakarta, 1988.
[2]  FAO, “ World Aquaculture, ” Rome, 2014.
[3]  M.  Glicksman, Food  Hydrocolloid.  Volume  II .  New  York:  CRC  Press, 1983.
[4]  KKP, “ Mina Bahari Edisi 4, ” Jakarta, 2016.
[5]  Badan  Pusat  Statistik  Sidoarjo, “ Statistik  Kecamatan  Jabon  2016, ” Sidoarjo, 2016.
[6]  E.  S.  A.  Parenrengi  and  R.  Syah, “ Penyediaan  Benih  dalam  Menunjang Kebun Bibit dan Budidaya Rumput Laut Kappaphycus alvarezii, ” Jakarta, 2007.
[7]  P.  R.  P.  Masak,  A.  Panrenrengi,  and  R.  M.  Tjaronge, “ Protokol  Seleksi Varietas Bibit Unggul Rumput Laut, ” Jakarta, 2011.
[8]  A.  Q.  Hurtado  and  D.  P.  Cheney, “ Propagule  Production  of  Eucheuma denticulatum  (Burman)  Collins  et  Harvey  by  Tissue  Culture, ” Bot  Mar , pp. 338 – 341, 2003.
[9]  N. S. Yokoya and Y. Yoneshique-Valentin, “ Micropropagation as a Tool for  Sustainable  Utilization  and  Conservation  of  Populations  of Rhodophyta, ” Rev. Bras. Farm. , vol. 21, pp. 334 – 339, 2011.
[10] C. H. Yu, P. E. Lim, and S. M. Phang, “ Effects of Irradiance and Salinity on  The  Growth  of  Carpospore-derived  Tetrasporophytes  of  Gracilaria edulis  and  Gracilaria  tenuistipitata  var  liui  (Rhodophyta), ” J.  Appl. Phycol , vol. 25, pp. 787 – 794, 2013.
[11] W. T. L. Yong et al. , “ Optimization of Culture Conditions for The Direct Regeneration  of  Kappaphycus  alvarezii  (Rhodophyta,  Solireiaceae), ” J Appl Phycol , 2013.
[12] E.  Sulistiani,  D.  T.  Soelistyowati,  Alimuddin,  and  S.  A.  Yani, “ Callus Induction  and  Filaments  Regeneration  from  Callus  of  Cottonii  Seaweed (Kappaphycus  alvarezii)  Collected  from  Natuna  Islands,  Riau  Islands Province, ” Biotropia (Bogor). , vol. 19, no. 2, pp. 103 – 144, 2012.
[13] C. R. K. Reddy, K. G. Rajakrishna, A. K. Siddhanata, A. Tewari, and K. Eswaran, “ In vitro Somatic Embryogenesis and Regeneration of Somatic Embryos  from  Pigmented  Callus  of  Kappaphycus  alvarezii  (Doty)  Doty (Rhodophyta, Gigartinales), ” J Phycol , vol. 39, pp. 610 – 616, 2003.
[14] P.  M.  Bradley  and  D.  P.  Cheney, “ Some  Effects  of  Plant  Regulators  on Tissue  Cultures  of  the  Marine  Red  Alga  Agardhiella  subulata (Gigartinales,  Rhodophyta), ” Hydrobiologia ,  vol.  204/205,  pp.  353 – 360, 1991.
0,00 0,10 0,20 0,30 0,40 0,50 IAA + … IAA + …
IAA . +… IAA . +… IAA .3 + …
IAA .3 +…
IAA .5 +… IAA .5 +… La ju P e rtu m b u h an (% /ha ri )
Konsentrasi ZPT (mg/l)
[15] N.  S.  Yokoya,  W.  A.  Stirk,    van  J.  Staden,  O.  Novak,  and  A.  V. Tureckova, “ Pencik  and  M.  Strnad.  Endogenous  Cytokinins,  Auxin,  and Abscisid  Acid  in  Red  Algae  from Brazil, ” J.  Phycol ,  vol.  46, pp.  1198 – 1205, 2010.
[16] Z.  Y.  Maryani, “ Penggandaan  Tunas  Krisan  melalui  Kultur  Jaringan, ” Ilmu Pertan. , vol. 12, no. 1, pp. 51 – 55, 2010.
[17] P. F.  Wareing and  I. D. J. Phillips, Growth and Differentiation in Plant . Oxford: Pergamon Press, 1981.
[18] A. Sahraroo, M. Babalar, M. H. Mirjalili, M. R. F. Moghaddam, and S. N.
Ebrahimi, “ In-vitro Callus Induction and Rosmarinic Acid Quantification in  Callus  Culture  of  Satureja  khuzistanica  Jamzad  (Lamiaceae), ” J. Pharm. Res. , vol. 13, no. 4, pp. 1447 – 1456, 2014.
[19] H.  Stocker  and  E.  Hafen, “ Genetic  Control  of  Cell  Size, ” Curr  Opin Genet Dev , vol. 10, pp. 529 – 535, 2000.
[20] D.  D.  Hall,  D.  D. Markwardt,  F.  Parviz,  and  W.  Heideman, “ Regulation of  The  Cln3-Cdc28  Kinase  by  cAMP  in  Saccharomyces  cerevisiae, ” EMBO J , vol. 17, pp. 4370 – 4378, 1998.
[21] P.  Jorgensen  and  M.  Tyers, “ How  Cells  Coordinate  Growth  and Division, ” Curr Biol , vol. 14, pp. R1014 – R1027, 2004.
[22] T.  Ulmasov,  Z.  B.  Liu,  G.  Hagen,  and  T.  J.  Guilfoyle, “ Composite Structure  of  Auxin  Response  Elements, ” Plant  Cell ,  vol.  7,  pp.  1611 – 1623, 1997.
[23] M.  L.  Evans, Function  of  hormones  at  the  cellular  of  organisation . Berlin: Springer Verlag, 1984.
[24] A.  S.  Hemerly et  al. , “ cdc2a  Expression  in  Arabidopsis  is  Linked  with Competence for Cell Division., ” Plant Cell , vol. 5, pp. 1711 – 1723, 1993. [25] P. C. Ferreira, A. S. Hemerly, J. D. Engler, M. van Montagu, G. Engler,
and D. Inze, “ Developmental Expression of the Arabidopsis Cyclin Gene Cyc1At, ” Plant Cell , vol. 6, pp. 1763 – 1774, 1994.
[26] P. Doerner and J. Celenza, How are Plant Growth Regulators Involved in Cell Cycle Control? in Plant Hormone Research (ed. K. Palme, J. Schell) . Springer, 2000.
[27] C.  Richard,  C.  Granier,  D.  Inze,  and  L.  De  Veylder, “ Analysis  of  Cell Division  Parameters  and  Cell  Cycle  Gene  Expression  during  The Cultivation of Arabidopsis thaliana Cell Suspensions, ” J Exp Bot , vol. 51, pp. 1625 – 1633, 2001.
[28] K. Himanen, E. Boucheron, S. Vanneste, J. de Almeida, D. I. Engler, and T.  Beeckman, “ Auxin-mediated  Cell  Cycle  Activation  During  Early Lateral Root Initiation, ” Plant Cell , vol. 14, pp. 2339 – 2351, 2002.
[29] Z.  Magyar,  L.  De  Veylder,  A.  Atanassova,  L.  Bako,  D.  Inze,  and  L. Bogre, “ The  Role  of  the  Arabidopsis  E2FB  Transcription  Factor  in Regulating  Auxin-dependent  Cell  Division, ” Plant  Cell ,  vol.  17,  pp. 2527 – 2541, 2005.
[30] K.  Tamura,  H.  Liu,  and  H.  Takahashi, “ Auxin  Induction  of  Cell  Cycle Regulated  Activity  of  Tobacco  Telomerase, ” J  Biol  Chem ,  vol.  274,  pp.
20997 – 21002, 1999.
[31] R. Soni, J. P. Carmichael, Z. H. Shah, and J. A. H. Murray, “ A Family of Cyclin  D  Homologs  from  Plants  Differentially  Controlled  by  Growth Regulators  and  Containing  The  Conserved  Retinoblastoma  Protein Interaction Motif, ” Plant Cell , vol. 7, pp. 85 – 103, 1995.
[32] N.  S.  Yokoya  and  W.  Handro, “ Effects  of  Plant  Growth  Regulators  and Culture  Medium  on  Morphogenesis  of  Solieria  filiformis  (Rhodophyta) Cultured in vitro, ” J Appl Phycol , vol. 14, pp. 97 – 102, 2002.