Skrining Potensi anti Jamur...

## SKRINING POTENSI ANTIJAMUR DARI JAMUR SIMBION SPONS TERHADAP JAMUR Trichophyton
Sp.

## *Popi Ida Laila Ayer, Korinus Rejauw dan Ervina Indrayani
*Jurusan Ilmu Kelautan dan Perikanan Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Cenderawasih. Jln. Kamp. Wolker, Waena. Jayapura.
*E-mail korespondensi: ayerpoppy@gmail.com INFORMASI ARTIKEL A B S T R A C T Diterima : 11 Oktober 2021 Sponges are marine organisms that are filter feeders so that they become a habitat for microorganisms. Microorganisms symbiont and sponge produce secondary metabolites as self-protection mechanisms which are then used to find active compounds that are useful for medicine (pharmacology). The aim of this study was to isolate the active fraction of the fungal symbiont sponge  and  Characterization  mikroskopiks  of  fungal  symbionts  sponge which has bioactivity as antifungals against Trichophyton sp. Sponge was taken from Opiaref Sea, Biak Numfor, Papua. Fungal symbiont of sponges was isolated by direct plate method. Purification of fungal symbiont was conducted  by  streak-plate  method.  Bioactivity  assay  of  fungal  symbiont sponges against Trichophyton sp. was conducted by agar diffusion method. Purification  of  bioactive  compound  was  conducted  by separatory  funnel ,
TLC  and  OCC.  Characterization  of  fungal  symbionts  sponge  by mikroskopiks. Fungal symbiont from sponge C1K1 has best bioactivity as antifungal against Trichophyton sp. are fungi with the isolates MT.C12 and MT.C14. Isolation of bioactive compound obtained 2 fractions that best in inhabiting fungi Trichophyton sp. Diameter of inhibition zone of MT.C12-1- 6 (13,44 mm) and MT.C14-1-4 (7,43 mm). TLC visualization with vanilin sulfuric acid indicated that MT.C12-1-6 and MT.C14-1-4 fraction form pink spots.  Based  on  the  color  formed  on  both  fractions  containing  alkaloids. Alkaloids are compounds that have biological activity of and provide certain physiological effects on organism. Disetujui : 14 November 2021 Terbit Online  : 30 Desember 2021 Key Words: Antifungal Sponges Trichophyton Sp

## PENDAHULUAN
Jamur Trichophyton sp.  merupakan jamur patogen yang menyebabkan penyakit kulit pada  manusia  maupun    hewan.  Jenis  penyakit kulit  yang  disebabkan  oleh  jamur Trichophyton sp.  disebut  Tinea  imbrikata,  penyakit  ini digolongkan dalam Dermatofitosis. Dermatofitosis adalah penyakit yang disebabkan oleh  kolonisasi  jamur  dermatofit  yang menyerang  jaringan  yang  mengandung  keratin seperti stratum korneum kulit, rambut dan kuku pada manusia dan hewan (Djuanda, 2011).
Sejauh  ini  infeksi  kulit  akibat  jamur Trichophyton sp.  di  obati  dengan  menggunakan obat antifungi sintetik yang diaplikasikan secara Topikal  dan  Sistemik.  Penggunaan  obat  sintetik secara terus menerus dengan tidak efektif selain dapat membunuh jamur, dapat memberikan efek samping  terhadap  manusia  sebagai  pengguna dan  mempercepat  perkembangan  spesies-
spesies  resisten  (Gandjar, dkk .,  2006;  Gholib,
2009). Salah  satu  alternatif  untuk  menemukan senyawa  antijamur  baru  yaitu  diperoleh  dari biota  laut  termasuk  spons  dan  simbionnya (Radjasa, dkk .,  2007).  Pemanfaatan  jamur simbion spons di Indonesia Timur khususnya di Pulau Biak belum banyak dilakukan. Berdasarkan Snellius II tahun 1989, sebanyak 830 jenis spons ditemukan  di  Perairan  Indonesia  Timur (Muniarsih,  2003).  Penelitian  lain  mengenai metabolit  sekunder  dilakukan  oleh  Rachmat (2007),  menunjukan  bahwa  wilayah  Indonesia Timur termasuk Biak memiliki keanekaragaman jenis spons yang tinggi. Spons yang ditemukan di perairan Indonesia Timur tersebut menghasilkan senyawa metabolit sekunder yang beranekaragam.  Menurut  Burgess, dkk (2003), mikroorganisme  yang  berasosiasi  dengan organisme  laut  mensintesis  metabolit  sekunder seperti inangnya.
Kelecom (2002), menambahkan bahwa mikroorganisme simbiotik
Jurnal Ilmu Kelautan dan Perikanan Papua Vol. 4, No. 2, Hal. 82-88 Desember 2021
P-ISSN: 2622-5476 E-ISSN: 2685-1865
DOI: 10.31957/acr. v4i2.2816 http://ejournal.uncen.ac.id/index.ph p/ACR
Skrining Potensi anti Jamur...
Ayer et al., 2021
biasanya menghasilkan metabolit sekunder yang mirip  dengan  metabolit  sekunder  yang dihasilkan oleh inangnya.
Jamur  simbion  spons  menghasilkan senyawa  metabolit  sekunder  yang  berpotensi dalam  bidang  farmakologi  (Rateb  dan  Ebel, 2011).  Senyawa  yang  dihasilkan  oleh  jamur berpotensi  sehingga  diaplikasikan  dalam  dunia kesehatan dan telah dibuktikan memiliki banyak sumber  metabolit  sekunder  aktif  yang  unik secara  struktur  (Bugni,  2004).  Hal  ini menunjukan  besarnya  potensi  penemuan alternatif antijamur Trichophyton sp. dari jamur simbion spons.
Berdasarkan latar belakang diatas maka tujuan dilakukan penelitian ini yaitu mengisolasi fraksi  aktif  pada  jamur  simbion  spons  yang memiliki bioaktivitas sebagai antijamur terhadap jamur Trichophyton sp.  dan  mengidentikasi jamur simbion spons yang memiliki bioaktivitas sebagai  antijamur  terhadap  jamur Trichophyton sp.

## MATERI DAN METODE

## Pengambilan Sampel Spons
Sampel spons pada penelitian ini diambil dari  perairan  Desa  Opiaref,  Kabupaten  Biak- Numfor,  Papua.  Pengambilan  sampel  spons dilakukan secara purposif  pada kedalaman 3-5 m menggunakan alat bantu snorkling .
Isolasi  jamur  simbion  spons  diperoleh dengan  cara  permukaan  spons  dibersihkan  dan disemprot dengan air laut steril. Kemudian spons dibelah  menggunakan cutter secara  membujur, setelah itu bagian dalam spons disemprot dengan air  laut  steril  dan  diletakkan  pada  petri  yang berisi  media  agar,  dengan  bagian  dalam  spons menghadap ke arah  agar.  Setelah  itu diinkubasi selama  2x24  jam  untuk  mendapatkan  biakan jamur simbion spons (Strobel dan Daisy, 2003).

## Ekstraksi
Jamur  simbion  spons  dikultur  masal menggunakan  metode  scale  up  dan  diinkubasi selama  2  minggu.  Sejumlah  miselium  jamur simbion  spons  di  maserasi  dengan  pelarut Metanol  selama  48  jam.  Perendaman  dilakukan sebanyak  dua  kali  (Trianto, dkk. ,  2004).  Filtrat yang  diperoleh  selanjutnya  di  evaporasi  pada suhu  37 ⁰ C  hingga  pelarut  menguap  sempurna dan didapatkan crude extract dari jamur simbion spons (Fajarningsih, 2012).
Pengujian  aktivitas  ekstrak  jamur simbion  spons terhadap jamur Trichophyton sp .
dilakukan  dengan  menggunakan  metode  difusi agar (Odzemir, dkk., 2006).  Konsentrasi ekstrak yang digunakan antara lain 500 µl, 250 µl, 125 µl, 75 µl dan 50 µl. Jamur Trichophyton sp. dikultur pada media PDB dan diinkubasi selama 1-2 hari. Suspensi jamur patogen diambil sebanyak 100µl dan  dituangkan  ke  media  PDA  padat  dalam cawan  petri  kemudian  diratakan  dengan menggunakan  spreader.  Diinkubasi  selama  60 menit. Paper  disk yang  telah  steril  di  tetesi ekstrak jamur simbion spons sebanyak 15µl pada setiap  konsentrasi  dan  diletakan  diatas  media yang telah ditumbuhi jamur patogen. Uji kontrol positif  menggunakan  antijamur Flukonazol dengan konsentrasi 500 µl.

## Isolasi dan purifikasi senyawa
Tahapan  isolasi dan purifikasi senyawa pada  penelitian  ini  meliputi, separatory  funnel (ekstraksi  partisi),  KLT  (Kromatografi  Lapis Tipis)  dan  KKT  (Kromatografi  Kolom  Terbuka) (Trianto, dkk ., 2011).

## Separatory funnel
Ekstrak  terpilih  dilarutkan  dengan beberapa tetes EtOAc, kemudian vial yang berisi ekstrak  ditambahkan  beberapa  tetes  air  untuk melarutkan  sebagian  ekstrak  yang  tidak  larut pada  EtOAc.  Ekstrak  tersebut  selanjutnya dipindahkan kedalam Separatory funnel . Perbandingan  pelarut  yang  digunakan  dalam separatory funnel adalah 3:1 (EtOAc:Air).

## Kromatografi Kolom Terbuka (KKT)
Fase  gerak  ditentukan  dengan  metode Kromatografi  Lapis  Tipis  (KLT).  Perbandingan fase gerak yang digunakan untuk fraksi MT.C12- 1  yaitu  Hex  100%,  Hex:EtOAc  (2:1),  Hex:EtOAc (1:2),  Hex:EtOAc  (5:1),  EtOAc  100%  dan  MeOH 100%. Perbandingan eluen untuk fraksi MT. C14- 1 Hex:EtOAc (2:1), Hex:EtOAc (1:2), EtOAc 100%, EtOAc:MeOH  (1:2)  dan  MeOH  100%.  Fase  diam menggunakan  adsorben  si-60.  Hasil  pemisahan fraksi selanjutnya di evaporasi pada suhu 35 ⁰ C. Fraksi-fraksi  yang  dihasilkan  selanjutnya diujikan terhadap jamur Trichophyton sp. dengan metode  difusi  agar  menggunakan  konsentrasi 500 µg/disk.
Karakteristik  Mikroskopik  Jamur  Simbion Spons
Identifikasi dilakukan
dengan mengamati  ciri  makroskopik  dan  mikroskopik jamur.  Ciri  makroskopik  yang  diamati  adalah warna,  bentuk  koloni  dan  tekstur  jamur.
4.36 16.86 16.35 14.61 7.85
4.33
5.67 3.76 1.8 0 4 8 12 16 20 500µg 250µg 125µg 75µg
50µg Konsentrasi Kontrol + MT.C12 MT.C14
zo n a h am b at (m m )
Pengamatan  ciri  mikroskopik  mencakup  hifa, konidia  dan  spora  serta  ciri  khusus  yang menentukan  jenis  jamur.  Jamur  ditumbuhkan pada  media  dan  diinkubasi  selama  4  hari. Miselium  jamur  diambil  dan  diletakkan  diatas kaca  preparat  yang  telah  ditetesi  Asam  Laktat, kemudian  ditutup  dengan  penutup  kaca. Selanjutnya  preparat  jamur  diamati  dibawah mikroskop pada perbesaran 400x (Samsons, dkk .,
2004;  Gandjar, dkk .,  2006).  Identifikasi menggunakan Fusarium  Interactive  Key (Seifert, K., 1996).

## HASIL DAN PEMBAHASAN Data sampel spons
Tiga sampel spons berhasil diambil dari perairan  Opiaref,  Kabupaten  Biak-Numfor, Papua. Sampel spons itu selanjutnya diberi kode X1K1, P1K1 dan C1K1. Berhasil diisolasi 25 jamur simbion  spons  dan  di  uji  potensi  antijamurnya
terhadap jamur Trichophyton sp. dengan metode overlay.  Hasilnya  menunjukan  bahwa  empat jamur  simbion  aktif  terhadap  jamur  uji, sedangkan  21  jamur  lainnya  tidak  aktif. Berdasarkan kejernihan zona hambat, dua jamur simbion  dipilih  untuk  uji  lanjut  yaitu  jamur dengan kode MT.C12 dan MT.C14.

## Ekstraksi
Ekstraksi senyawa bioaktif dari ekstrak simbion  spons  dilakukan  dengan  menggunakan metode  maserasi  yaitu  perendaman  dengan pelarut  metanol.  Tujuan  dilakukan  ekstraksi adalah untuk mendapatkan komponen- komponen  bioaktif  suatu  bahan  berupa  ekstrak yang akan digunakan untuk uji antijamur (Voight, 1995).
Data  hasil  perhitungan    zona  hambat ekstrak  kasar  jamur  simbion  spons  terhadap jamur uji disajikan pada Gambar 1.
Gambar 1. Grafik zona hambat ekstrak kasar jamur simbion spons dengan kode isolat MT.C12 dan MT.C14 terhadap jamur Trichophyton sp. menggunakan konsentrasi 500 µg, 250 µg, 125 µg, 75 µg dan 50 µg.
Uji aktivitas antijamur dari ekstrak kasar kedua  isolat  jamur  simbion  spons  terhadap jamur  uji  yaitu  jamur Trichophyton sp. mempunyai bioaktivitas yang berbeda. Diameter zona  hambat  yang  dihasilkan  ekstrak  jamur simbion  spons  MT.C12  pada  konsentrasi  500 µg/disk  adalah  16,86  mm.  Berbeda  dengan diameter  zona  hambat  yang  dihasilkan  oleh ekstrak jamur simbion MT.C14 pada konsentrasi 500  µg/disk  yaitu  5,67  mm  terhadap  jamur  uji. Perbedaan  zona  hambat  pada  masing-masing ekstrak  menunjukkan  jumlah  senyawa  bioaktif yang berbeda pada kedua ekstrak jamur simbion spons tersebut (Alfiah, dkk ., 2015).
Ukuran penghambatan dipengaruhi oleh sensitivitas  organisme,  medium  kultur,  kondisi
inkubasi,  dan  kecepatan  difusi  agar.  Kecepatan difusi  agar  dipengaruhi  oleh  konsentrasi mikroorganisme. Sensitivitas jamur uji terhadap ekstrak  jamur  simbion  spons  terjadi  karena adanya  gangguan  pada  dinding  sel  yang mengakibatkan  dinding  sel  jamur  patogen menjadi lisis (Madigan, 2006).

## Separatory Funnel
Pemisahan  senyawa  fraksi  etil  asetat (semi  polar)  dan  fraksi  air  (polar)  dilakukan dengan separatory  funnel .  Fraksi  yang  telah dipisahkan  kemudian  diuji  terhadap  jamur patogen Trichophyton sp.  Perhitungan  zona hambat disajikan pada Gambar 2.
Skrining Potensi anti Jamur...
4.2 6,70 8.36 6.13 6.39 4.26 4.41 0 2 4 6 8 10 Kontrol + MT.C12-1 MT.C12-2 MT.C14-1
MT.C14-2 Fraksi 500µg
250µg 125µg 75µg zo n a h am b at (m m )
Gambar  2.  Grafik  zona  hambat  Fraksi  EtOAc  dan  Air  dari  ekstrak  MT.C12  dan  MT.C14  terhadap  jamur Trichophyton sp.
Hasil  uji  senyawa  antijamur  dari keempat fraksi terhadap jamur Trichophyton sp. menunjukan  bahwa,  fraksi  EtOAc  dari  kedua ekstrak  memiliki  aktivitas  antijamur  terhadap jamur uji, sedangkan fraksi air dari kedua ekstrak tidak  memiliki  aktivitas  antijamur.  Menurut Pasto  dan  Miller  (1992),  ekstrak  semi-polar  ke arah  non-polar  lebih  berpotensi  menimbulkan sifat  toksik  karena  sifat  dari  senyawa  sukar diekskresikan  oleh  organisme  dibandingkan senyawa  yang  lebih  polar.  Selain  itu,  senyawa polar  cenderung  tidak  bersifat  bioaktif  karena sulit  menembus  dinding  sel  jamur  yang  terdiri dari  lapisan  kitin  dan  selulosa  (Gandjar, dkk.,
2006;  Alexopouus  dan  Mimms,  1979;  Madigan, dkk ., 2006).
Kromatografi  Kolom  Terbuka  (KKT)  dan Kromatografi Lapis Tipis (KLT).
Fraksi  MT.C12-1  dan  MT.C14-1 difraksinasi dengan metode Kromatografi Kolom Terbuka.  Pelarut  yang  digunakan  untuk memisahkan  fraksi  MT.C12-1  yaitu  (Hex  100%, Hex:EtOAc  (2:1),  Hex:EtOAc  (1:2),  Hex:EtOAc (5:1),  EtOAc  100%,  MeOH  100%)  dihasilkan  6 fraksi.  Fraksi  MT.C14-1  digunakan  pelarut  (Hex 100%, Hex:EtOAc (1:2), EtOAc 100%, EtOAc:MeOH (1:2) dan MeOH 100%) dihasilkan 5 fraksi.
Gambar 3. Grafik zona hambat fraksi MT C12-1-6 dan MT C14-1-4 terhadap jamur Trichophyton sp. dengan konsentrasi 500 µg/disk.
Hasil  uji  antijamur  menunjukan  bahwa zona  hambat  yang  dihasilkan  oleh  kedua  fraksi pada  tahap  Kromatografi  Kolom  Terbuka  lebih besar  dari  zona  hambat  yang  dihasilkan  oleh kedua  ekstrak  pada  fraksi  EtOAc.  Hal  ini disebabkan  oleh  beberapa  hal,  yaitu  menurut Sudarmadji, dkk (2007),  ukuran  zona  hambat yang tebentuk dipengaruhi oleh potensi bioaktif, konsentrasi dan tingkat difusi bahan uji kedalam agar. Pada saat uji antijamur fraksi EtOAc, kedua
fraksi  menghasilkan  zona  hambat  yang  lebih kecil,  hasil  ini  dapat  disebabkan  karena konsentrasi yang digunakan pada saat uji adalah 250  µg/disk.  Sedangkan  pada  uji  ekstrak  kasar dan  Kromatografi  Kolom  Terbuka  digunakan konsentrasi  yang  lebih  besar  yaitu  500  µg/disk sehingga menghasilkan zona hambat yang besar. Hal  ini  sesuai  dengan  pendapat  Astuti ,  dkk (2003), bahwa konsentrasi yang digunakan pada uji antijamur umumnya lebih tinggi karena jamur
4 , 46 13.73 7.4 4.23 13.16 7.46 0 3 6 9 12 15 kontrol + MT C12-1-6 MT C14-1-4 Fraksi U1 U2 zo n a h am b at (m m )
Skrining Potensi anti Jamur...
Ayer et al., 2021
memiliki  hifa  yang  terdiri  dari  sel  kitin  atau selulosa  sehingga  akan  lebih  sulit  untuk dihambat oleh senyawa pada konsentrasi rendah (Gandjar, dkk., 2006;  Alexopoulus  dan  Mimms,
1979; Madigan, dkk ., 2006). Identifikasi  komponen  memisah  (spot) dapat didasarkan pada nilai Rf dan warna bercak (Nyiredi  dan  Glowiniak,  2001;  Cimpou,  2006). Hasil  visualisasi  kedua  fraksi  dengan  vanilin asam sulfat diperoleh bahwa, fraksi MT.C12-1-6 dan  MT.C14-1-4  membentuk  spot  berwarna merah muda, dengan nilai Rf 0,86 dan 0,90. Dapat dikatakan bahwa senyawa yang terkandung pada kedua  fraksi  bersifat  non-polar.  Berdasarkan
warna yang terbentuk pada kedua fraksi tersebut diduga mengandung alkaloid. Menurut Harbone (1987),  deteksi  senyawa  dari  suatu  bahan menggunakan  vanilin  asam  sulfat  apabila membentuk  spot  dengan  warna  merah  muda menunjukan adanya alkaloid. Alkaloid merupakan  senyawa  yang  memiliki  keaktifan biologis dan memberikan efek fisiologis tertentu pada makhluk hidup. Alkaloid memiliki aktivitas sebagai  antijamur  dengan  merusak  dinding  sel jamur,  menghambat  respirasi  sel  jamur, menghambat sintesis asam nukleat, protein serta membran fosfolipid (Rahayu dan Rahayu, 2009; Adegoke dan Adebo-tayo, 2009).

## Karakteristik Mikroskopik
Hasil  pengamatan  mikroskopik  kedua isolat  jamur  simbion  spons  C1K1  yang  telah
diketahui  memiliki  potensi  dalam  menghambat jamur  patogen Trichophyton sp.  dapat  dilihat pada Gambar 4.
Gambar  4.  (a)  Morfologi  isolat  jamur  simbion  spons  C1K1  dengan  kode  isolat  MT  C12;  (b)  bentuk mikromorfologi jamur simbion spons MT C12 dengan perbesaran 400x; (c) Makronidia; (d) Mikronidia. Keterangan: Gambar 5 (b) 1 = Konidospora; 2 = Klamidospora;  3 = Hifa. (e) Morfologi isolat jamur simbion spons C1K1 dengan kode isolat MT C14; (f) Mikromorfologi jamur  simbion  spons  MT  C14  dengan  perbesaran  400x.  Keterangan:  Gambar  (f).  1  = Klamidospora; 2 =  Konidospora; 3 =  Hifa.
Hasil  pengamatan  karakter  morfologi secara makroskopik dan mikroskopik pada isolat jamur MT.C12 dan MT.C14 mendekati deskripsi karakter morfologi Fusarium (Seifert, K.,  1996). Pengamatan  karakteristik  makroskopik,  jamur simbion  spons  MT.C12  memiliki  miselium  yang berwarna putih dan tengahnya berwarna oranye
(2 hari) pada MEA. Tekstur jamur MT.C12 adalah seperti  kapas.  Secara  mikroskopik,  bentuk morfologi dari isolat jamur MT.C12 yang terlihat yaitu  terdapatnya  konidiospora,  klamidospora, hifa,  makronidia,  dan  mikronidia.  Hifa  pada jamur  simbion  MT.C12    merupakan  hifa  yang bersekat  ( septatet ).  Hifa  bersekat  adalah  salah
a b c d 1 2 3 3 2 1 e f
Skrining Potensi anti Jamur...
Ayer et al., 2021
satu karakteristik hifa pada jamur yang tergolong dalam  kelas  Ascomycota  (Barnett  dan  Hunter, 2003 dalam Ilyas, M., 2007). Bentuk konidospora bercabang,  serta  klamidospora  yang  bulat. Makronidia berbentuk melengkung atau meruncing  pada  ujungnya  dan  mikronidianya melengkung  (Chehri, dkk. ,  2011;  Song,  M. dkk ., 2014). Hasil pengamatan karakteristik makroskopik,  isolat  jamur  MT.C14  memiliki miselium  berwarna  putih  pada  MEA  dan teksturnya  seperti  kapas.  Bentuk  morfologi mikroskopiknya  terdiri  dari    konidiospora, klamidospora  dan  hifa.  Hifa  pada  jamur  ini berseptat seperti hifa  Fusarium pada umumnya serta  bentuk  klamidosporanya  bulat  (Chehri, dkk. , 2011; Song, M. dkk ., 2014).
KESIMPULAN
1. Isolasi  senyawa  diperoleh  2  fraksi terbaik  dalam  menghambat  jamur  uji, yaitu fraksi MT.C12-1-6 (13,44mm) dan fraksi MT.C14-1-4 (7,43 mm). Visualisasi KLT  dengan  vanilin  asam  sulfat mengindikasikan fraksi MT.C12-1-6 dan MT.C14-1-4  membentuk spot  berwarna merah  muda,  dengan  nilai  Rf  0,86  dan 0,90. Berdasarkan warna yang terbentuk pada  kedua  fraksi  tersebut  diduga mengandung alkaloid.
2. Karakter morfologi secara makroskopik dan  mikroskopik  pada  isolat  jamur
MT.C12 dan MT.C14 mendekati deskripsi karakter morfologi Fusarium.

## Daftar Pustaka
Adegoke,  A.A.  dan  Adebayo-tayo,  B.C.  2009.
Antibacterial activity and phytochemical analysis  of  leaf  extracts  of Lasienthera africanum. African Journal of Biotechnology . 3(3): 156-161.
Alexopoulus,  C.J.  dan  Mims,  C.W.  1979.
Introductory  Mycology.  Third  Editon. John Wiley & Sons, Inc.USA. hal. 561.
Alfiah,  R.R.,  Khotimah,  S.  dan  Turnip,  N.  2015. Efektivitas  Ekstrak  Metanol  Daun Sembung  Rambat  ( Mikania  micrantha Kunth)  Terhadap  Pertumbuhan  Jamur Candida albicans . Protobiont . 4(1):52-57. Bugni,  T.  S.,  dan  Ireland,  C.M.  2004.  Marine derived  fungi:  a  chemically  and biologically diverse
group of microorganisms. Nat. Prod. Rep . 21:143 – 163.
Burgess, J.G., K.G. Boyd., E.  Armstrong., Z.  Jiang., L.Yan., M. Berggre., U. May., T. Pisacane., Granmo, A. dan Adams, D.  R. 2003.  The
Development  of  a  marinenatural product-based antifouling paint. Biofouling, Suppl. 197-205. Chehri, K., Salleh, B., Yli-Matttila, T., Reddy, K.R.N. dan  Abbasi,  S.  2011.  Molecular Characterization Of Pathogenic Fusarium  Species  In  Cucurbit  Plants From Kermanshah Province, Iran. Saudi Journal of Biological Science . 18:341-351. Cimpoui,  C.  2006.  Analysis  of  Some  Natural Antioxidants by Thin-Layer Chromatography and High Performance Thin-Layer  Chromatography. J.  Liquid Chrom. Tech. 29:1125-1142. Djuanda,  A.  2011.  Ilmu  Penyakit  Kulit  dan Kelamin.  Edisi  6.  Fakultas  Kedokteran Universitas Indonesia. Jakarta. p. 3-4, 7- 8. Fajarningsih, N.D., A. Pratitis., T. Wikanta dan E. Chasanah.  2012.  Bioprospeksi  Kapang yang berasosiasi dengan Biota Laut Asal Kepulauan  Seribu  Sebagai  Antitumor T47D  dan  HepG2.  JPB.  Perikanan. 7(1):21-30.
Gandjar, I. Samson,. A.R. Oetari dan A. Santoso, I.
2006.  Mikologi:  Dasar  dan  Terapan. Umum.Yayasan Obor Indonesia. Jakarta. hal. 234.
Gholib, D. dan Darmono. 2009. Skrining ekstrak tanaman sebagai anti fungi pada kapang dermatofit Trichophyton mentagrophytes secara  in  vitro.  Prosiding  Seminar Nasional  dan  Pameran  Pengembangan Teknologi Tanaman Obat dan Aromatik. Pusat  Penelitian  dan  Pengembangan Perkebunan  Balai Penelitian  Tanaman Obat dan Aromatik, Bogor . 537-541. Harborne, J.B. 1987. Metode Fitokimia : Penuntun Cara  Modern  Menganalisis  Tumbuhan .
Institut  Teknologi  Bandung,  Bandung. (diterjemahkan oleh Kosasih
Padmawinata dan Iwang Soediro).
Ilyas, M. 2007. Isolation and identification mould micoflora inhabiting plant leaf litter from Mount  Lawu,  Surakarta,  Central  Java. Biodiversitas . 8(2): 105-110.
Kelecom,  A.  2002.  Secondary  metabolites  from marine  microorganisms. An. Acad.  Bras.
Cienc. 74(1):151 – 170.
Madigan,  M.T.  dan  Martinko  J.M.  2006.  Brock: Biology  of  Microorganism.  Pearson Education International.
Muniarsih,  T.  2003.  Metabolit  Sekunder  dari Spons  Sebagai  Bahan  Obat-obatan. Oseana . 28(3):27-33. Nyiredi,  S.Z.  dan  K.  Glowniak.  2001.  Planar Chromatography  in  Medicinal  Plant
Skrining Potensi anti Jamur...
Ayer et al., 2021
Research.  In  Planar  Chromatography. Springer Scientific Publisher. Ozdemir,  G.,  N.U.  Karabay,  Meltem,  C.D.  dan Baris,P. 2006. Antimicrobiol Activities of Volatile Component and Various Extracts of Dictyopters  membranaceae and
Cystoseira  barbata
From  the  Coast  of Izmir. Turkey. Pharmacea. Biol . 44(3):183-188.
Radjasa,  O.K.,  T.  Martens,  H.P.  Grossart,  T.
Brinkoff, A. Sabdono dan M. Simon. 2007. Antagonistic  activity  of  a  marine bacterium Pseudoalteromonas luteoviolacea TAB4.2  associated  with coral Acropora sp. J. Biol. Sci. 2:239-246. Rachmat,  R.  2007.  Spons  Indonesia  Kawasan Timur,
Keragaman, Distribusi, Kelimpahan  dan  Kandungan  Meatbolit Sekundernya. Oseanologi  dan  Limnologi di Indonesia . 33:123 – 138.
Rateb,  M.E.  dan  Ebel,  R.  2011.  Secondary metabolites of fungi from marinehabitats. Nat  Prod  Rep .  28:290 – 344.
Rahayu,  T.  dan  Rahayu,  T.  2009.  Uji  Antijamur
Kombucha  Coffee  terhadap Candida albicans dan Tricophyton mentagrophytes . Jurnal Penelitian Sains & Teknologi . 10(1):10 – 17.
Samsons,  R.A.,  E.S.  Hoekstra  dan  J.C.  Frisvad. 2004. Introduction to food and airborne
fungi.  7th  ed.  Centraalbureau  voor Schimmelcultures, Utrecht. 389 hlm. Song,  M.,  Yun,  H.Y.  dan  Kim,  Y.H.  2014. Antagonistic  Bacillus  Species  As  a Biological  Control  of  Ginseng  Root  Rot Caused  by Fusarium  cf.  Incarnatum . J. Ginseng Res .  38:136-145. Seifert, K. 1996. Fusarium Interactive Key. Agri- Food  and  Agroalimentaire.  Canada.  1- 65pp.
Strobel, G. and Daisy, B. 2003. Biosprospecting for Microbial Endophytes and Their Natural Products. Microbiol  and  Mol.  Biol . 67:491-502.
Sudarmadji,  S.,  B.  Haryono  dan  Suhardi.  2007. Prosedur  Analisa  Bahan  Makanan  dan Pertanian. Liberty, Yogyakarta.
Trianto,  A.,  Ambariyanto,  R.  Murwani.  2004. Skrining  Bahan  Antikanker  pada Berbagai  Jenis  Sponge  dan  Gorgonian terhadap L1210 Cell Line . Ilmu Kelautan .
9(3):120-124. Trianto,  A.,  I.  Hermawan,  T.  Suzuka,  J.  Tanaka. 2011. Two New Cytotoxic Candidaspongiolides from an Indonesian
Sponge. ISRN Pharmaceutics . 6p. Voight  R.  1995.  Buku  Pelajaran  Teknologi Farmasi,  Edisi  V.  Diterjemahkan  oleh Soendani  Noerono.  Gadjah  Mada University Press.Yogyakarta.