Jurnal Farmasi Galenika (Galenika Journal of Pharmacy) 2018; 4 (2): 106 – 112 ISSN : 2442-8744 (electronic) http://jurnal.untad.ac.id/jurnal/index.php/Galenika/index DOI : 10.22487/j24428744. 2018.v4.i2.11077

## Mikroenkapsulasi Antosianin Kulit Buah Kakao (Theobroma cacao  L.) Dengan Metode Koaservasi Kompleks
( Microencapsulation of Anthocyanine of   Kakao (Theobroma cacao L.) Bark  with  Complex Coaservation)

## Siska Syahfitri Lubis, Evi Sulastri, Muhammad Sulaiman Zubair
Program Studi Farmasi, Fakultas MIPA, Universitas Tadulako, Palu-Sulawesi Tengah, 94118
Article Info: Received: 12 Agustus 2018 in revised form: 02 September 2018 Accepted: 10 September 2018 Available Online: 01 October 2018

## ABSTRACT
Anthocyanin is a class of antioxidants that are widely found in the skin of cocoa fruit (Theobroma cacao L.). Anthocyanin degradation occurs not only during the extraction process from plant tissues but also  during the storage process. The microencapsulation process can protect the active substance from environmental influences or improve the stability of the preparation. This study aims to characterize anthocyanin microcapsules from cocoa (Theobroma cacao L.) fruit peel using a complex coacervation method, therefore, it  can  provide economic value added from this plant. Anthocyanin microencapsulation was formulated using a coating of   gelatin: arabic gom  with  different concentrations of 1:1, 3:2, and 2:1. Microcapsule characterization was organoleptic and morphological test, particle size distribution, moisture content test, absorption efficiency, recovery test, antioxidant activity of the preparation, and FTIR analysis. The results showed that extract yield was  39.82%, optimum microcapsule characterization was obtained from 1: 1 concentration with 36.65% recovery test, 80.40% absorption efficiency, and antioxidant activity with IC 50 of 20.52 ppm.
Keywords :
Microencapsulation Anthocyanine
Kakao
Theobroma cacao Complex Coaservation
Corresponding Author:
Evi Sulastri
Program Studi Farmasi
Universitas Tadulako Palu 94118
Evisulas3@gmail.com
Copyright © 2017 JFG-UNTAD
This open access article is distributed under a Creative Commons Attribution (CC-BY-NC-SA) 4.0 International license.

## How to cite (APA 6th Style):
Lubis,  S.S.,  et al. (2018). Mikroenkapsulasi Antosianin Kulit Buah Kakao ( Theobroma cacao L.) dengan Metode Koaservasi Kompleks. Jurnal Farmasi Galenika: Galenika Journal of Pharmacy, 4(2), 106-112. doi:10.22487/j24428744.2018.v4.i2.11077

## ABSTRAK
Antosianin merupakan golongan antioksidan yang banyak terdapat pada kulit buah kakao (Theobroma cacao L.). Degradasi antosianin terjadi tidak hanya selama proses ekstraksi dari jaringan tumbuhan tetapi juga selama proses penyimpanan. Proses mikroenkapsulasi dapat melindungi zat aktif dari pengaruh lingkungan atau meningkatkan stabilitas sediaan. Penelitian ini bertujuan untuk melakukan karakterisasi sediaan  mikrokapsul  antosianin dari kulit buah kakao (Theobroma cacao L.) dengan metode koaservasi kompleks, sehingga dapat memberikan nilai tambah secara ekonomis dari tanaman tersebut. Mikroenkapsulasi antosianin diformulasi menggunakan penyalut gelatin-gom arab dengan perbedaan konsentrasi 1:1,3:2,2:1. Karakterisasi mikrokapsul adalah uji organoleptis dan morfologi, distribusi ukuran partikel, Uji kadar air, Efesiensi penjerapan,Uji perolehan kembali, aktivitas antioksidan sediaan, Analisis FTIR. Hasil penelitian menunjukkan rendamen ekstrak 39,82%, karakterisasi mikrokapsul yang optimum diperoleh dari konsentrasi 1:1 dengan Uji perolehan kembali 36,65%, Efesiensi penjerapan 80,40%, dan aktivitas antioksidan dengan nilai IC 50 20,52 ppm.
Kata kunci : Antosianin, Kulit buah kakao, Mikroenkapsulasi

## PENDAHULUAN
Buah kakao ( Theobroma cacao L.)  merupakan salah satu tanaman perkebunan yang telah banyak dibudidayakan diberbagai daerah di Indonesia. Data Statistik Perkebunan Indonesia tahun 2014-2016, menyebutkan bahwa produksi buah kakao tertinggi di hasilkan oleh provinsi Sulawesi Tengah dengan jumlah produksi 161.467 ton dengan luas area 291.445 Ha. Namun, dalam pengolahan  buah  kakao ( Theobroma cacao L.) menjadi cokelat, bagian yang dimanfaatkan hanyalah keping bijinya saja, sedangkan kulit buahnya dibuang. Kulit buah kakao ( Theobroma  cacao L.) beratnya mencapai 75% dari seluruh berat buah, sehingga dapat dikatakan bahwa limbah utama dalam pengelolahan buah kakao ( Theobroma cacao L.) adalah kulit buah (Supriyanto, 1990). Tanaman kakao ( Theobroma cacao L.) mengandung senyawa antioksidan  dan antiradikal yang telah diuji secara invitro, beberapa dari senyawa fenolik tersebut yaitu katekin, epikatekin, antosianidin, proantosianidin, asam fenolik, dan beberapa flavonoid lainnya (Arlorio et al., 2005). Kulit kakao ( Theobroma cacao L.) mempunyai potensi sebagai bahan antioksidan alami yang berfungsi memodulasi sistem imun, efek kemopreventif untuk pencegahan penyakit jantung koroner dan kanker .
Antosianin merupakan golongan antioksidan yang banyak terdapat pada kulit buah kakao ( Theobroma cacao L.) yang terikat dengan glukosa (Figueira,
Janick,  &  BeMiller, 1993) . Degradasi antosianin terjadi tidak hanya selama ekstraksi dari jaringan tumbuhan tetapi juga selama proses penyimpanan. Ketidakstabilan antosianin dipengaruhi oleh beberapa faktor antara lain, pH, temperatur, cahaya dan oksigen serta faktor lainnya seperti ion logam (Niendyah, 2004). Proses mikroenkapsulasi dapat melindungi zat aktif dari pengaruh lingkungan atau meningkatkan stabilitas sediaan (Aschida, Adhitiyawarman, & Destiarti, 2014).
Dari metode-metode yang dipakai dalam pembuatan mikrokapsul, koaservasi kompleks adalah metode yang paling awal ditemukan dan telah diaplikasikan secara luas, proses koaservasi kompleks merupakan suatu metode pembuatan mikrokapsul dengan memanfaatkan sifat makromolekul yang mengandung senyawa kation dan anion untuk berinteraksi secara elektrostatik membentuk kapsul (Yeo, Bellas, Firestone, Langer, & Kohane, 2005). Gelatin dan gom arab dipilih sebagai penyalut sebab keduanya merupakan makromolekul yang larut air sehingga lebih mudah dalam pembentukan mikrokapsul. Selain itu, baik gelatin maupun gom arab sama-sama merupakan biopolimer yang tidak berbahaya karena tergolong  biopolimer generally recognized as safe (GRAS), tersedia melimpah di alam dan keduanya umum digunakan pada penelitian enkapsulasi dengan metode koaservasi kompleks (Qv, Zeng, & Jiang, 2011).  Siow & Ong  (2013) telah melakukan penelitian pembuatan mikrokapsul antioksidan minyak bawang putih dengan metode koaservasi
kompleks menghasilkan mikrokapsul tertinggi dengan karakteristik yaitu untuk gelatin tipe A -gom arab (pH 4,5,  rasio gelatin-gom arab 1:1, rasio bahan inti-bahan penyalut 6:1) mikrokapsul yang dihasilkan 86,6%, ekstrak terkapsulkan 98,6%, ukuran partikel 101,6 mikrometer, gelatin tipe B-gom arab (pH 3,5, rasio gelatin-gom arab 1:1, rasio bahan inti-bahan penyalut 6:1) mikrokapsul yang dihasilkan 85,0%, ekstrak terkapsulkan 96,2%, ukuran partikel 94,5 mikrometer.
Berdasarkan uraian diatas, maka pada penelitian ini akan dilakukan  pengembangan formulasi antosianin dari kulit buah kakao ( Theobroma cacao L.) dalam bentuk sediaan mikrokapsul dengan menggunakan metode koaservasi kompleks. Selanjutnya dilakukan pengujian karakteristik mikrokapsul yang meliputi Uji organoleptik, pemeriksaan morfologi mikrokapsul, ukuran partikel mikrokapsul, Uji Perolehan Kembali (UPK), penetapan kadar air, efesiensi penjerapan mikrokapsul, Uji aktivitas antioksidan mikrokapsul, dan Analisis FTIR.

## METODE PENELITIAN Alat dan Bahan
Alat-alat yang digunakan pada penelitian ini adalah, wadah maserasi, rotary vacum evaporator ,neraca analitik, hot plate ,termometer, digital stirrer , oven, mikroskop cahaya, SEM ( Scanning Electronic Microscopy ), spektrofotometer Fourier Transform Infrared (FT-IR), spektrofotometer UV-Vis, pH meter, deksikator, dan peralatan gelas lainnya yang umum digunakan dalam laboratorium.
Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah kulit buah kakao ( Theobroma cacao L.), Asam sitrat, Etanol p.a, DPPH, Asam asetat, NaOH, HCl, KBr, gelatin, Gom arab, minyak jagung, Glutaraldehid, aquadest, KCl, natrium asetat.

## Persiapan simplisia
Buah kakao ( Theobroma cacao L.) yang telah matang (kulit buah berwarna kuning kejinggaan dan biji sudah dapat diolah menjadi coklat) dipetik secara manual. Buah kakao segar yang telah dipetik kemudian dipotong secara melintang dan dikeluarkan bijinya menggunakan tangan. Selanjutnya kulit buah kakao ( Theobroma cacao L.) (meliputi bagian epikarpium, mesokarpium dan endokarpium) dipotong-potong kecil, dan dikeringkandengan cara diangin-anginkan pada suhu ruang. Potongan tersebut lalu dihaluskan dengan blender hingga diperoleh serbuk simplisia kulit buah kakao.

## Ekstraksi
Metode ekstraksi dilakukan mengikuti  metode Simanjuntak, Sinaga, & Fatimah, (2014), 600 g simplisia dimaserasi menggunakan pelarut Aquadest dan Asam sitrat 10%. Aquadest merupakan larutan netral yang dapat melarutkan pigmen antosianin karena antosianin adalah senyawa yang larut dalam pelarut polar dan sifat pigmen antosianin umumna bersifat asam dan lebih stabil dalam kondisi asam. Perbandingan volume pelarut yang digunakan1:6 sebanyak 1200 ml dengan lama ekstraksi 3 hari pada suhu ruang, kemudian disaring dan filtratnya ditampung. Filtrat yang diperoleh diuapkan dengan rotary evaporator pada suhu 40 0 C sehingga didapatkan ekstrak kental.Ekstrak yang didapatkan disimpan dalam wadah yang terhindar dari cahaya dan dimasukkan kedalam freezer pada suhu ± 5 0 C.

## Uji identifikasi antosianin
Identifikasi antosianin dapat dilakukan dengan cara melakukan  analisisi kualitatif dengan menggunakan pengujian pewarnaan menambahkan HCl 2M pada sampel kemudian dipanaskan selama 5 menit, apabila sampel tetap berwarna merah maka sampel positif mengandung antosianin (Harbone, 1987).

## Uji aktivitas antioksian ekstrak antosianin
Ditimbang 1.9716 mg DPPH, masukkan dalam labu ukur 10 ml kemudian ditambahkandengan etanol pro analisis dan kocok.  Sebanyak 10 ml larutan DPPH induk, dimasukkan ke dalam labu ukur lalu ditambahkan etanol pro analisis hingga 50 ml. Dipipet 5 ml larutan blanko, kemudian dihomogenkan dan dibiarkan selama 30 menit selanjutnya diukur serapannya pada panjang gelombang 517.Diambil 10mg ekstrak kulit buah naga super merah. Lalu dimasukkan ke dalam labu ukur dan ditambahkan etanol pro analisis hingga 10 ml,  sehingga diperoleh konsentrasi 1000 ppm. Selanjutnya lakukan pengenceran dengan cara dipipet 0,5 ml, 0,4 ml, 0,3 ml, 0,2 ml, 0,1 ml, dan 0,05 mldari larutan induk sampel. Lalu masing-masing dimasukkan ke dalam labu ukur 10 ml dan ditambahkan dengan etanol pro analisis sehingga diperoleh konsentrasi 100 ppm, 80 ppm, 60 ppm, 40 ppm, 20 ppm, dan 10 ppm.Selanjutnya dipipet 2,5 ml dari masing-masing konsentrasi lalu masukkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan dengan 2,5 ml larutan DPPH blanko. Kemudian didiamkan selama
30 menit dan diukur absorbansinya pada panjang gelombang 517 nm.

## Formulasi Mikrokapsul
Pembuatan mikrokapsul dilakukan mengikuti metode Siow  & Ong  (2013) dengan beberapa modifikasi sebagai berikut:  Ekstrak dan minyak jagung dicampurkan terlebih dahulu selanjutnya ditambahkan emulgator tween 80. Dibuat Gelatin tipe A konsentrasi (1%, 1,3%, 1,2% w/v) dan gom arab konsentrasi (1%, 0,7%, 0,8% w/v) masing-masing dengan cara dilarutkan dengan aquadestpada suhu 40 0 C dalam waterbath . Selanjutnya ekstrak diemulsikan kedalam larutan gelatin tipe A konsentrasi (1%, 1,3%, 1,2% w/v) menggunakan digital stirrer dengan kecepatan 200 rpm selama 30 menit. Selanjutnya ditambahkan gom arab konsentrasi (1%, 0,7%, 0,8% w/v) secara bertahap untuk menghasilkan bobot biopolymer 2 gram dengan volume akhir 200 ml. Pengadukan terus dilakukan dengan kecepatan 200 rpm menggunakan digital stirrer pada suhu 40 0 C selama 30 menit. Selanjutnya atur pH dengan menambahkan larutan asam asetat 10% v/v hingga didapat pH 3,5 untuk membentuk koasevasi kompleks. Selanjutnya campuran didinginkan pada suhu 5 0 C sambil diaduk dengan kecepatan 200 rpm. Larutan Glutaraldehid (2 ml/280 g) ditambahkan kedalam campuran selanjutnya campuran ditambahkan NaOH 20% w/v hingga didapat pH 9 untuk mengeraskan dinding penyalut. Campuran diaduk dengan kecepatan 200 rpm selama 60 menit. Pengadukan dihentikan sampai terbentuk lapisan koaservat diatas campuran. Lapisan koaservat dicuci dengan 50 ml Aquadest dingin dan disaring dengan pompa vacum menggunakan kertas Whatman No.1 . Tahap pencucian dihentikan sampai filtrat diperoleh. Mikrokapsul dikeringkan dengan cara kering beku. Selanjutnya mikrokapsul disimpan dalam desikator untuk mengurangi kelembaban sampai bobot konstan diperoleh. Kemudian dilakukan Karakterisasi mikrokapsul berupa uji organoleptik, efesiensi penjerapan, Uji perolehan kembali, uji kadar air, distribusi ukuran partikel, morfologi mikrokapsul, analisis FTIR.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Pembuatan Ekstrak Kulit Buah Kakao (Theobroma cacao. L).
Hasil ekstrak kental kulit buah kakao yaitu 119,46 gram, dengan persen rendamen sebesar 39,82%.

## Hasil uji identifikasi antosianin
Hasil dari pengujian warna dari ekstrak kulit buah kakao yaitu positif warna tetap merah. Hasil dapat dilihat pada (Gambar 1) dibawah ini.

## Gambar 1. Hasil identifikasi antosianin

## Pengujian aktivitas antioksidan ekstrak
Pengujian aktivitas antioksidan ekstrak kulit buah kakao diperoleh nilai IC 50 = 20.52 µg/mL dari nilai IC 50 yang diperoleh dinyatakan bahwa ekstrak kulit buah kakao memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat. Suatu senyawa dikatakan antioksidan sangat kuat jika nilai IC 50 kurang dari 50 µg/mL (Leiwakabessy, 2011).

## Karakterisasi mikrokapsul Uji  Organoleptik
Hasil pemeriksaan organoleptis mikrokapsul yang dihasilkan dari metode koaservasi kompleks dari formula I (1:1) berupa serbuk cokelat gelap, berbau minyak, formula II (3:2) berupa serbuk cokelat kemerahan, berbau minyak, dan formula III (2:1) berupa cokelat gelap, berbau minyak. Hasil pengujian organoleptis dapat dilihat pada (Gambar 2)

## Gambar 2. Hasil organoleptik

## Efesiensi penjerapan
Hasil efesiensi penjerapan mikrokapsul yang diperoleh dari formula I (1:1) 80.40% ± 8.87, formula II (3:2) 17,01% ± 9.72, formula III (2:1) 51,06% ± 28.62.Efesiensi penjerapan belum mencapai 100% dapat disebabkan karena banyak hal, salah satu faktor yang dapat menyebabkan adalah senyawa yang berdifusi keluar melalui pori yang terbentuk pada dinding mikrokapsul saat pencucian.

## Uji perolehan kembali
Hasil pengujian perolehan kembali yang diperoleh pada formula I (1:1) 36.65%, formula II (3:2)
36.35%, dan formula III (2:1) 43.05%. Semakin besar konsentrasi penyalut yang digunakan maka semakin besar uji perolehan kembali yang dihasilkan. Uji perolehan kembali yang dihasilkan tidak sesuai, hal ini disebabkan karena dalam proses pembuatan mikrokapsul hilangnya koaesrvat dapat disebabkan pada saat melakukan adjust pH, dan menempelnya koaservat pada  kertas saring dan wadah pada saat memisahkan koaservat dengan fase air.

## Kadar air
Kadar ekstrak yang digunakan adalah 8,41%, kadar air penyalut gelatin 7,49% gom arab 13,51%, dan kadar air mikrokapsul untuk formul I (1:1) 3,69% ± SD 0,254, formula II (3:2) 4,61% ± SD 0,192 formula III (2:1) 4,77% ±SD 0,190. Perbedaan kadar air yang diperoleh dapat dipengaruhi oleh kadar air zat aktif ataupun penyalut yang digunakan. Semakin banyak jumlah penyalut yang digunakan maka meningkat pula kadar air yang diperoleh (Febriyenti, Ben, & Prima 2013).

## Distribusi Ukuran partikel
Hasil pengukuran distribusi ukuran partikel mikrokapsul yang diperoleh pada formula I (1:1) 18.38388 µm, formula II (3:2) 25.13576 µm, formula III (2:1) 27.01747 µm. Menurut  Madene, Jacquot, Scher, & Desobry, (2006)  ukuran partikel dengan metode koaservasi kompleks adalah 5-200 µm.

## Morfologi mikrokapsul
Hasil morfologi mikrokapsul dilakukan menggunakan alat SEM ( Scanning Electron Microscope ). Berdasarkan hasil pengamatan morfologi mikrokapsul formula I (1:1)  berbentuk bulat tidak sempurna (sferis) dengan permukaan sedikit berpori, formula II (3:2) berbentuk sferis dengan permukaan berpori, formula III (2:1) berbentuk sferis dengan permukaan berpori. Hal ini sesuai dengan penelitian Kamala (2010) mikrokapenkapsulasi vitamin A dengan penyalut gelatin-gom arab, mikrokapsul ang dihasilkan berbentuk sferis.
a.                 b.                   c.
Gambar 3. Hasil SEM Mikrokapsul. a. Mikrokapsul 1:1, b. Mikrokapsul 3:2, c. Mikrokapsul 2:1

## Analisis FTIR
Hasil analisis spektrum inframerah pada (Gambar 1 ekstrak kulit buah cokelat) memperlihatkan adanya senyawa antosianin dibuktikan dengan adanya gugus C-O-C pada peak 1234,44 cm -1 ,  -C-NO 2 pada peak 1419,61  cm -1 , C=C pada peak 1635,64 cm -1 , C-OH pada peak 1732,08 cm -1 , CH pada peak 2929,87 cm -1 . Hasil FTIR dapat dilihat pada (Gambar 4) dibawah.
Gambar 4. Spektrum FTIR ekstrak kulit buah cokelat
Hasil analisis spektrum inframerah pada (Gambar 2 Mikrokapsul 1:1) memperlihatkan adanya penyalut gelatin dibuktikan dengan gugus NH amina sekunder dan primer pada peak 3450,65 cm -1 , amina N-H(b) pada peak 1589,34 cm -1 . Identifikasi penyalut gom arab dibuktikan dengan adanya gugus CH pada peak 2942,09 cm -1 , terdapatb gugus karbohidrat pada peak 844,82 cm -1 sampai peak 1193,94 cm -1. . Identifikasi senyawa antosianin dibuktikan dengan adanya gugus aldehida pada peak 2854,65 cm -1 , gugus C=C pada peak 1633,71 cm -1 , gugus -N=N-  pada peak 1589,34 cm -1 , gugus -C-NO 2 pada peak 1305,81 cm -1 sampai 1417,68 cm -1 (Gambar 5).

## Gambar 5. Spektrum FTIR Mikrokapsul 1:1
Hasil analisis spektrum inframerah pada (Gambar 2 Mikrokapsul 3:2) memperlihatkaan adanya penyalut
gelatin dibuktikan dengan gugus NH amina sekunder dan primer pada peak 3450,65 cm -1 , amida pada peak 3290,56 cm -1 . Identifikasi penyalut gom arab dibuktikan dengan adanya gugus CH pada peak 2926,01 cm -1 , gugus OH pada peak 3558,67 cm -1 , gugus karbohidrat pada peak 844,82-1159,22 cm - 1 .Identifikasi senyawa antosianin dibuktikan dengan adanya gugus aldehida pada peak 2854,65 cm -1 , gugus C=C pada peak 1624,06 cm -1 , gugus CO pada peak 1554,63 cm -1 , gugus -C-NO 2 pada peak 305,81- 1480 cm -1 , gugus C-O-C pada peak 1240,23 cm -1 . Hasil FTIR dapat dilihat pada gambar 6.

## Gambar 6. Spektrum FTIR Mikrokapsul 3:2
Hasil analisis spektrum inframerah pada (Gambar 2 Mikrokapsul 2:1) memperlihatkaan adanya penyalut gelatin dibuktikan dengan adanya gugus amina sekunder dan primer NH pada peak 3452,58 cm -1 , gugus  amida NH pada peak 3284,77 cm -1 , gugus amina N-H(b) pada peak 1589,34 cm -1 . Identifikasi penyalut gom arab dibuktikan dengan adanya gugus CH pada peak 2926,01 cm -1 , gugus karbohidrat pada peak 844,82-1190,08 cm -1 . Identifikasi senyawa antosianin dibuktikan  dengan adanya gugus C-O-C pada peak1242,16 cm -1 , gugus -C-NO 2 pada peak 1305,81-1436,97 cm -1 . Hasil FTIR dapat dilihat pada gambar 7.
Gambar 7. Spektrum FTIR Mikrokapsul 2:1
Hasil FTIR pada ekstrak dan mikrokapsul sesuai dengan penelitian sebelumnya yaitu hasil identifikasi dengan spektrofotometer FTIR, antosianin memiliki gugus O-H, CH2, C=O karbonil, C=C aromatik, =C- H aromatik, C-O-C eter, C-O alkohol dan substitusi benzena yang memperkuat hasil analisis spektroskopi UV-Vis yang menandakan adanya gugus aromatik, - OH, serta C=O karbonil, hasil identifikasi gelatin dengan spektrofotometer FTIR adalah gugus amida A (3270-3370 cm -1 ), amida B 2947 cm -1 , C=O 1637 cm - 1 , hasil identifikasi gom arab dengan spektrofotometer FTIR adalah gugus OH, CH, COO,dan karbohidrat  (Ibekwe, Oyatogun, Esan, & Oluwasegun, 2017; Lestari, Kusrini, & Anam, 2014).

## Uji aktivitas antioksidan mikrokapsul
Hasil aktivitas antioksidan mikrokapsul antosianin dengan nilai IC 50 pada formula I (1:1) 20,52 ppm, formula II (3:2) 32,1 ppm, formula III (2:1) 30,56 ppm dari nilai IC 50 yang diperoleh dinyatakan bahwa ekstrak kulit buah kakao memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat. Suatu senyawa dikatakan antioksidan sangat kuat jika nilai IC 50 kurang dari 50 µg/mL (Leiwakabessy, 2011).

## KESIMPULAN
Karakterisasi  mikrokapsul yang optimum dihasilkan oleh mikrokapsul perbandingan 1:1 dengan hasil Uji perolehan kembali  36,65%, Efesiensi penjerapan 80,40%, Uji kadar air 3,69%, distribusi ukuran partikel  18.38388 µm, aktivitas antioksidan sangat kuat dengan nilai IC 50 20,52 ppm.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Terima kasih penulis ucapkan kepada kanda Istigfarin dan Iyam Santoso atas bantuannya selama melaksanakan penelitian ini .

## DAFTAR PUSTAKA
Arlorio, M., Coïsson, J. D., Travaglia, F., Varsaldi,
F., Miglio, G., Lombardi, G., & Martelli, A. (2005). Antioxidant and biological activity of phenolic pigments from Theobroma cacao hulls extracted with supercritical CO 2. Food Research International , 38 , 1009–1014.
Aschida, C. J., Adhitiyawarman, & Destiarti, L. (2014). Enkapsulasi dan Uji Stabilitas Pigmen Karotenoid dari Buah Tomat yang Tersalut Carboxy Methyl Cellulose (CMC).
JKK , 3 (2), 44–49.
Febriyenti, Ben E.S., Prima T., (2013). Formulasi Mikrokapsul Glikuidon Menggunakan Penyalut Etil Selulosa Dengan Metode Emulsifikasi Penguapan Pelarut. Fakultas Farmasi Universitas Andalas , Padang.
Figueira, A., Janick,  J., BeMiller, J.N.  (1993). New products from Theobroma cacao : Seed pulp and  pod gum. p. 475-478. In: J. Janick and J.E. Simon (eds.), New crops. Wiley, New York
Harborne, J.B. (1987). Metode Fitokimia Penuntun Cara Modern Menganalisa Tumbuhan, Terjemahan K. Padmawinata Edisi II.
Bandung: ITB Press.
Ibekwe, C. A., Oyatogun, G. M.,  Esan, T. A., & Oluwasegun, K. M. (2017). Synthesis and Characterization of Chitosan / Gum Arabic Nanoparticles for Bone Regeneration. American Journal of Materials Science and Engineering , 5 (1), 28–36.
Kamala, N. (2010). Mikroenkapsulasi Vitamin A
Palmitat Dengan Menggunakan Gelatin
Akasia Secara Koaservasi Kompleks. Skripsi.
Universitas Indonesia. Depok.
Leiwakabessy, J. (2011). Komposisi Kimia dan
Identifikasi Senyawa Antioksidan dari
Ekstrak Tambelo (Bactronophorus
Thoracites) (Master's thesis, Sekolah
Pascasarjana Institut Pertanian Bogor, 2011).
Bogor: Institut Pertanian Bogor.
Lestari, P. P., Kusrini, D., & Anam, K. (2014). Anthocyanin Identification of Methanol-HCl Extract Active Fraction in Rosella ( Hibiscus Sabdariffa . L ) and Its Potential as Xanthine
Oxidase Inhibitor. Jurnal Sains Dan Matematika , 22 (3), 72–78.
Madene, A., Jacquot, M., Scher, J., & Desobry, S.
(2006). Flavour encapsulation and controlled release  –  a review. International Journal of
Food Science and Technology , 41 , 1–21.
Niendyah, H.  (2004). Efektivitas Jenis Pelarut dan Bentuk Pigmen Antosianin Bunga Kana (Canna coccinea mill.) Serta Aplikasinya pada Produk Pangan. Skripsi. Universitas Brawijaya, Malang.
Qv, X., Zeng, Z., & Jiang, J. (2011). Preparation of lutein microencapsulation by complex coacervation method and its physicochemical properties and stability. Food Hydrocolloids ,
25 (6), 1596–1603.
Simanjuntak, L., Sinaga, C., & Fatimah. (2014).
Ekstraksi Pigmen Antosianin dari Kulit Buah Naga Merah (Hylocereus Polyrhizus). Jurnal Teknik Kimia , 3 (2), 25–29.
Siow, L., & Ong, C. (2013). Effect of pH on Garlic Oil Encapsulation by Complex Coacervation. Journal of Food Processing & Technology ,
4 (1), 1–5.
Supriyanto. (1990). Karakteristik Tepung Kulit Buah Coklat. Yogyakarta: Laporan Penelitian Fakultas Teknologi Pertanian UGM.
Yeo, Y., Bellas, E., Firestone, W., Langer, R., & Kohane, D. S. (2005). Complex Coacervates for Thermally Sensitive Controlled Release of Flavor Compounds. Journal of Agricultural and Food Chemistry , 53, 7518- 7525.