Pematahan Dormansi Benih Cabai Rawit Lokal (Capsicum frutescens L. ) Asal Kecamatan Insana Tengah Kabupaten Timor Tengah Utara dengan Aplikasi Plant Growt Promoting Rhizobacteria (PGPR)
Laudius Nahak a a Fakultas Pertanian, Universitas Timor, Kefamenanu, TTU – NTT, Indonesia, email: ladisnahak952@gmail.com
Article Info Abstrak Article history: Received 16 Desember 2020 Received in revised form 28 Maret 2021 Accepted 30 Juni 2021 Penelitian  ini  bertujuan  mengetahui  respon  benih  terhadap  perlakuan  yang  digunakan  dan  lama  perendaman  benih  yang  tepat  terhadap benih  cabai  rawit  lokal.  Penelitian  ini  telah  dilaksanakan    pada  bulan  Agustus-September  2020  di  laboratorium  Fakultas  Pertanian, Universitas  Timor  Kelurahan  Sasi,  Kecamatan  Kota  Kefamenanu,  Kabupaten  TTU.  Rancangan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAK)  pola  faktorial.  Faktor  pertama  dosis  PGPR  yang  terdiri  dari  3  perlakuan  yaitu  tanpa  PGPR kontrol, PGPR 25g/5 L dan PGPR 50 g/5 L. Faktor kedua adalah lama perendaman yang terdiri dari 3 perendaman yaitu perendaman 90 menit,  perendaman  120  menit  dan  perendaman  150  menit.  Terdapat  9  kombinasi  perlakuan  yang  diulang  3  kali  sehingga  seluruhnya terdapat 27 satuan percobaan. Hasil penelitian menunjukkan Respon benih cabai rawit lokal terhadap dosis PGPR dan waktu perendaman menunjukkan tidak terjadi interaksi tetapi terjadi interaksi pada parameter Potensi Tumbuh Maksimal. Perlakuan tanpa PGPR (Ko ntrol) memberikan hasil terbaik  dan  berbeda nyata  dengan perlakuan PGPR pada  parameter pengamatan indeks  vigor,  berat kering kecambah normal sedangkan parameter pengamatan lain tidak berbeda nyata. Perlakuan lama waktu perendaman PGPR terhadap benih cabai tid ak berbeda  nyata  kecuali  pada  parameter  pengamatan  indeks  vigor  dengan  lama  waktu  perendaman  90  menit  maupun  pada  parameter pengamatan berat kering kecambah normal yang tidak berbeda nyata dengan lama perendaman 120 menit.
DOI: https://doi.org/10.32938/sc.v6i04.1239
Keywords: Capsicum frutescens L. PGPR Dosis Lama perendaman.

## 1. Pendahuluan
Cabai  rawit  adalah  salah  satu  tanaman  hortikultura  yang  mempunyai harga  jual  yang  sangat  tinggi  ketika  permintaan  dari  konsumen  yang  sangat banyak  dan penyediannya lebih  sedikit  dari  permintaan. Cabai rawit  termasuk golongan spesies atau family solanaceae. Menurut Cahyono (2003) , cabai rawit lokal  sebagai  salah  satu  tanaman  hortikultura  dari  famili  solanaceae  yang memilki  nilai  ekonomi  yang  sangat  tinggi.  Cabai  rawit  dapat  dikategorikan tanaman  umur  panjang  karena  bisa  bertahan  hidup  sampai  satu  tahun  dan memiliki umur panen berkisar 3-4 bulan setelah tanam. Alif (2017) , cabai rawit berumur panjang, dapat hidup sampai umur satu tahun dan dapat dipanen pada umur  4-5  bulan.  Tanaman  cabai  rawit  mempunyai  khasiat  atau  sebagai  obat- obatan  yang  bisa  mengobati  penyakit  kanker  karena  mengandung  capsaicin. Selain  itu  tanaman  cabai  rawit  mengandung  banyak  vitamin  yang  terkandung dalam  buahnya.  Dormansi  dapat  dinyatakan  sebagai  kondisi  terjadinya hambatan  perkecambahan  yang  disebabkan  embrio  mengalami  belum  matang dan  beberapa  kendala  seperti  kulit  atau  adanya  suatu  zat  atau  materi  yang menutupi  jaringan  benih  ( Baskin  dan  Baskin,  2005 ).  Tipe  dormansi  benih berbeda antara  semua jenis benih. Cabai rawit lokal termasuk  salah  satu benih yang mempunyai masa dormansi lama. Hal ini terjadi karena benih cabai rawit tergolong benih yang berkulit keras.
Kulit  benih  yang  keras  menghambat  proses  penyerapan  air  dan  gas kedalam  benih  untuk  mempercepat  proses  kecambahan. Jäkel  and  Witzler (2018) melaporkan  bahwa  kultivar  varietas  liar  capsicum  memiliki perkecambahan  yang lama. Dormansi  yang pada umumnya dialami  oleh benih cabai rawit berlangsung selama satu atau dua minggu bahkan sampai beberapa bulan  ( Siginingsih,  2014 ).    Hal  ini  dipengaruh  oleh  faktor-faktor  penghambat perkecambahan  benih  seperti  kulit  benih. Sombalatu et  al, 2017 menyatakan bahwa  dormansi  yang  pada  umumya  oleh  benih  cabai  rawit  lokal  yaitu dormansi  fisik kulit  benih. Barchenger dan Bosland (2016) melaporkan bahwa capsaicin merupakan metabolisme sekunder yang berperan dalam metabolisme dan  merupakan penyebab  dormansi pada  beberapa kultivar cabai. Benih  cabai liar  dilaporkan  mengalami  dormansi  benih  ( Quintaro et  al., 2018 ).  Benih tanjung memiliki kulit biji yang keras dan pada daging buah yang tebal terdapat senyawa  aromatik  inhibitor  yang  menghasilkan  aroma  tertentu  didalam  biji yang menjadikan salah satu faktor penyebab dormansi ( Winarni, 2010 ). Upaya pematahan dormansi dapat dilakukan secara fisik yaitu skarifikasi, perendaman air  panas  dan  pelukaan  di  sekitar  embrio  serta  dapat  dilakukan  juga  secara kimiawi  yaitu  penggunaan H2SO4,  KNO3, HCl dan  hormon Giberelin ( Sandi et al., 2014 ). Untuk meningkat proses perkecambahan pada benih yang memilki dormansi yang lama dengan melakukan pematahan dormansi pada benih.
Pematahan dormansi benih merupakan salah satu cara atau metode yang digunakan  untuk  mempercepat  proses  perkecambahan  dari  benih  yang dibudidayakan.  Dalam  proses  pematahan  dormansi  benih  tentu  mempunyai teknik atau metode yang berbeda tergantung pada bentuk fisik benih. Perlakuan yang umum dilakukan untuk  dormansi kulit  benih adalah perendaman  dengan air panas, skarifikasi mekanik dan kimia serta aerasi udara panas ( Olmez et al., 2007 ).  Perlakuan perendaman dengan air dapat dilakukan untuk memecah kulit biji dan memudahkan embrio menyerap air.  Metode skarifikasi secara mekanis dan  kimia  (perendaman  air  panas  dan  bahan  kimia)  merupakan  teknik  yang digunakan untuk memecah dormansi ( Mousavi, 2011 ). Hasil penelitian Lensari (2009) perlakuan pematahan dormansi pada benih Angsana dengan perendaman H2SO4 1% selama 10 menit dan perendaman dengan KNO3 1% selama 24 jam mampu  meningkatkan  daya  perkecambahan  biji  Angsana.    Hasil  penelitian Azad et al. (2010) bahwa perlakuan perendaman benih Melia azedarach dengan air suhu 80ºC dapat meningkatkan perkecambahan (69%) dibandingkan dengan perendaman  air  dingin  (39%).  Penggunaan  H2SO4  20%  dapat  mematahkan dormansi pada benih Aren ( Arenga pinnata ) dan meningkatkan potensi tumbuh
83.33%, daya kecambah 46.67%, nilai penundaan perkecambahan 16.67% dan indeks vigor 26.67% ( Rahayu, 2013 ).
Salah  satu  bahan  yang  digunakan  untuk  pematahan  benih  adalah Plant Growth  Promoting Rhizobacteria (PGPR).  PGPR  merupakan  salah  satu  bahan organik hayati yang mampu memberikan pertumbuhan serta hasil pada tanaman yang  baik.  Menurut  ( Loon,  2007 )  PGPR  merupakan  mikroba  tanah  yang terdapat  pada  akar  tanaman  dan  dapat  meningkatkan  pertumbuhan  dan perlindungan  terhadap  patogen  tertentu.  Selain  pada  pertumbuhan  tanaman PGPR bisa membantu dalam proses perkecambahan pada benih. Hal ini terjadi karena  terdapat  beberapa  hormon  tumbuh  pada  PGPR  yang  mampu  percepat dalam  proses  perkecambahan,  pertumbuhan  dan  hasil.  Menurut Rahni  (2012) , mengemukakan  bahwa  PGPR  dapat  memproduksi  fitohormon  yaitu  IAA, sitokinin,  giberelin,  etilen  dan  asam  absisat,  dimana  IAA  merupakan  bentuk aktif  dari  hormon  auksin  yang  dijumpai  pada  tanaman  dan  berperan meningkatkan kualitas dan hasil panen.
Berdasarkan  kandungan  yang  dimiliki  oleh  PGPR  tentu  mempunyai peran  dan  fungsinya  masing-masing.  Ketika  PGPR  akan  digunakan  dalam proses  perkecambahan  tidak  lagi  mengherankan  karena  mempunyai  hormon yang  berperan  sebagai  pemacu  perkecambahan  yaitu  sitokinin  dan  giberelin. Pernyataan  ini  dapat  didukung  oleh Krishnamoorthy  (1981) ,  bahwa  hormon giberelin  berperan  sebagai  katalisator  dalam  perubahan  pati  menjadi  glukosa yang  oleh  benih  digunakan  untuk  pertumbuhan  dan  perkembangan  embrio menjadi  kecambah.  Prinsip  dari  PGPR  berdasarkan  kandungan  tersebut  tentu sudah memberikan satu harapan yang pasti yaitu memberikan keuntungan. Hal ini  diperkuat  oleh Figueiredo et  al., (2010) bahwa  prinsip  pemberian  PGPR adalah  meningkatkan  jumlah  bakteri  yang  aktif  di  sekitar  perakaran  tanaman sehingga  memberikan  keuntungan  bagi  tanaman.  Keuntungan  penggunaan PGPR adalah  meningkatkan kadar  mineral  dan  fiksasi  nitrogen,  meningkatkan tolerasi  tanaman  terhadap  cekaman  lingkungan,  sebagai  biofertiliser,  agen biologi kontorol,  melindungi tanaman dari  patogen  serta  peningkatan  produksi Indol-3-Acetic  Acid ( Figueiredo et  al., 2010 ).  Berpijak  dari  upaya  untuk mematahkan  dormansi  benih  yang  lama,  maka  penelitian  ini  bertujuan  untuk mengetahui respon benih terhadap perlakuan dosis  PGPR yang  digunakan  dan untuk  mengetahui  lama  perendaman  benih  dalam  PGPR  yang  tepat  terhadap benih cabai rawit lokal.

## 2. Metode
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan  Agustus-September  2020  yang bertempat  di  laboratorium  Fakultas  Pertanian  Universitas  Timor  Kelurahan Sasi,  Kecamatan  Kota  Kefamenanu,  Kabupaten  Timor  Tengah  Utara  (TTU). Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  benih  cabai  rawit  yang berasal  dari  daerah  TTU.  Rancangan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAK)  pola  faktorial.  Faktor  pertama  dosis PGPR  yang  terdiri  dari  3  perlakuan  yaitu  tanpa  PGPR  kontrol  (D0),  PGPR 25g/5 L (D1) dan PGPR 50 g/5 L, (D2). Faktor kedua adalah lama perendaman yang  terdiri  dari  3  perendaman  yaitu  perendaman  90  menit  (T1),  perendaman 120 menit (T2) dan perendaman 150 menit (T3). Kedua faktor ini akan diulang sebanyak  3  kali  dengan  kombinasi  D0T1,  D0T2,  D0T3,  D1T1,  D1T2,  D1T3, D2T1,  D2T2,  D2T3  peralkuan  ini  di  ulang  sebanyak  3  kali.  sehingga seluruhnya  terdapat  27  satuan  percobaan.  Data  hasil  pengamatan  pengujian pematahan  dormansi  benih  cabai  rawit  lokal  dianalisis  menggunakan  analisis ragam. Hasil analisis yang menunjukkan pengaruh nyata dilanjutkan dengan uji Duncan Multiple Range Test (DMRT).
3. Hasil dan Pembahasan 3.1. Hasil Potensi Tumbuh Maksimum (%) Potensi Tumbuh Maksimum (PTM) merupakan salah
satu parameter viabilitas  benih  ( Sutopo,  2004 ).  Besarnya  nilai  PTM menunjukkan  kondisi  viabilitas  benih  yang  tinggi  ( Justice  dan  Bass,  2002 ). PTM  berarti  benih  yang  dapat tumbuh, baik  yang  tumbuh  normal  maupun tumbuh  abnormal  pada  batas  tertentu. Analisis  sidik  ragam  (Anova) menunjukkan  terjadi  interaksi  (P<0.05)  antara  perlakuan  dosis  PGPR  dengan waktu perendaman terhadap parameter  PTM.  Aras perlakuan  dosis  PGPR  dan waktu  perendaman  berpengaruh  nyata  dalam  menghasilkan  PTM.  Pada perlakuan tanpa PGPR (kontrol) memberikan nilai tertinggi yaitu 44,33 % dan waktu perendaman 150 menit memberikan nilai tertinggi 41.78 % ( Tabel 1 ).
Tabel 1. Potensi tumbuh maksimal (%) Dosis PGPR (g/5 L) Waktu Perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 41.33bc 66.67ab 76.00a 44.33 25 24.00c 29.33c 24.00c 17.56 50 28.00c 21.33c 28.00c 15.00 Rerata 31.33 40.00 41.78 (+)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyatamenurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor (+) terjadi interaksi.
Daya Berkecambah (%)
Daya  kecambah  benih  adalah  pengujian  akan  sejumlah  benih,  berupa persentase  dari  jumlah  benih  tersebut  yang  dapat  atau  mampu  berkecambah pada    jangka  waktu  yang  telah  ditentukan  ( Danuarti,  2005 ).  Analisis  sidik ragam  (Anova)  menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi  antara  perlakuan  dosis PGPR  dengan  waktu  perendaman  terhadap  parameter  daya  berkecambah. Perlakuan  tanpa  PGPR  mampu  menghasilkan  daya  berkecambah  lebih  tinggi dibandingkan perlakuan lainnya yaitu sebesar 22,67 % ( Tabel 2 )
Tabel 2. Daya berkecambah (%) Dosis PGPR (g/5 L) Waktu Perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 18.67 28.00 21.33 22.67a 25 10.67 9.33 9.33 9.78b 50 13.33 13.33 20.00 15.56ab Rerata 14.22a 16.89a 16.89a (-)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyata menurut uji  DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor

## Indeks Vigor (%)
Vigor  adalah  kemampuan  benih  untuk  tumbuh  normal  dalam  keadaan lapangan  produksi  sub  optimun  atau  kemampuan  untuk  disimpan  dalam kondisi  sub  simpan  sub  optimun  (terbuka) Schimint  (2000) .  Analisis  sidik ragam  (Anova)  menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi  antara  perlakuan  dosis PGPR  dengan  waktu  perendaman  terhadap  parameter  indeks  vigor.  Aras perlakuan  dosis  PGPR  maupun  waktu  perendaman  meghasilkan  indeks  vigor yang  berbeda nyata antar aras  perlakuan. Namun perlakuan  yang  memberikan nilai  indeks  vigor  tertinggi  yaitu  perlakuan  tanpa  PGPR  (kontrol)  dan  waktu perendaman 90 menit dengan nilai 4.89 % ( Tabel 3 ).
Tabel 3. Indeks vigor (%) Dosis PGPR (g/5 L) Waktu Perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 6.67 5.33 2.67 4.89a 25 4.00 1.33 1.33 2.22b 50 4.00 1.33 2.67 2.67b Rerata 4.89a 2.67b 2.22b (-)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyata menurut uji     DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor

## Kecepatan Tumbuh (%)
Analisis  sidik  ragam  (Anova)  menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi  antara perlakuan  dosis  PGPR  dengan  waktu  perendaman  terhadap  parameter kecepatan  tumbuh.  Aras  perlakuan  dosis  PGPR  menghasilkan  kecepatan tumbuh  yang  berbeda  nyata  antara  aras  perlakuan.  Aras  perlakuan  waktu perendaman  menghasilkan  kecepatan  tumbuh  tidak  berbeda  nyata  antara  aras perlakuan.  Namun  perlakuan  tanpa  dosis  PGPR  (kontrol)  memberikan  nilai kecepatan  tumbuh  tertinggi  2,02  %  dan  waktu  perendaman  150  menit memberikan nilai kecepatan tumbuh tertinggi yaitu 1,56 % ( Tabel 4 ).
Tabel 4. Kecepatan Tumbuh (%) Dosis PGPR (g/5 L) Waktu Perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 1.52 2.39 2.15 2.02a 25 0.82 0.74 0.78 0.78b 50 1.04 1.33 1.75 1.37ab Rerata 1.13a 1.49a 1.56a (-)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor.

## Keserempakan Tumbuh
Sadjad  (1993) menyatakan,  nilai  keserempakan  tumbuh  berkisar  antara 40 %  -70  %  tergolong tinggi,  dan  nilai keserempakan tumbuh lebih  dari 70% mengartikan  bahwa  vigor  kekuatan  sangat  tinggi.    Pertumbuhan  kecambah secara  serempak  menandakan  kekuatan  tumbuh  suatu  benih  tinggi  ( Sadjad, 1994 ).  Analisis  sidik  ragam  (Anova)  menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi (P>0.05)  antara  perlakuan  dosis  PGPR  dengan  waktu  perendaman  terhadap keserempakan  tumbuh.  Aras  perlakuan  dosis  PGPR  maupun  waktu perendaman  menghasilkan  keserempakan  tumbuh  tidak  berbeda  nyata  antara aras  perlakuan.  Namun  perlakuan  yang  memberikan  nilai  tertinggi  adalah perlakuan  tanpa  dosis  PGPR  dan  dosis  50  gram  yaitu  sebesar  0,02  %  serta perlakuan  waktu perendaman 120 menit  dengan  nilai yang  sama  yaitu 0,02 % ( Tabel 5 ).
Tabel 5. Keserempakan Tumbuh. Dosis PGPR (g/5 L) Waktu Perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 0.01 0.03 0.01 0.02a 25 0.00 0.00 0.00 0.00a 50 0.00 0.04 0.01 0.02a Rerata 0.00a 0.02a 0.01a (-)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyata menurut uji   DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor.
Berat Kering Kecambah Normal (gram)
Menurut Ilyas  (2012) ,  berat  kering  kecambah  normal  (BKKN) menggambarkan  viabilitas  potensial  benih  yang  ditanam  pada  kondisi optimum.  Analisis  sidik  ragam  (Anova)  menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi (P>0.05)  antara  perlakuan  dosis  PGPR  dengan  waktu  perendaman  terhadap parameter berat kering kecambah normal. Aras perlakuan dosis PGPR maupun waktu  perendaman  menghasilkan  berat  kecambah  normal  yang  berbeda  nyata antara  aras  perlakuan.  Namun  perlakuan  tanpa  PGPR  (kontrol)  memberikan nilai tertinggi  yaitu 0.10  gram dan  waktu  perendaman 120  menit  memberikan nilai tertinggi 0,07 gram ( Tabel 6 ).
Tabel 6. Berat Kering Kecambah Normal (gram)
Dosis PGPR (g/5 L) Waktu Perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 0.09 0.13 0.08 0.10a 25 0.02 0.04 0.04 0.03b 50 0.05 0.05 0.02 0.04b Rerata 0.05ab 0.07a 0.05b (-)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyata menurut uji     DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor
Tinggi Tanaman (cm)
Menurut Sitompul  dan  Guritno,  (1995) menyatakan  bahwa  tinggi tanaman  merupakan  ukuran  tanaman  yang  sering  diamati  baik  sebagai indikator  pertumbuhan  maupun  sebagai  parameter  yang  digunakan  untuk mengukur pengaruh lingkungan atau perlakuan yang ditetapkan. Analisis sidik ragam (Anova)  menunjukkan tidak  terjadi interaksi (P>0.05) antara  perlakuan dosis  PGPR  dengan  waktu  perendaman  terhadap  parameter  tinggi  tanaman. Aras  perlakuan  dosis  PGPR  maupun  waktu  perendaman  memberikan  tinggi tanaman  tidak  berbeda  nyata  antara  aras  perlakuan.  Namun  perlakuan  dosis PGPR  50  gram  memebrikan  nilai  tinggi  tanaman  tertinggi  yaitu  3.09  cm  dan waktu  perendaman  150  menit  memberikan  nilai  tinggi  tanaman  tertinggi dengan nilai 3,23 cm ( Tabel 7 ).
Tabel 7. Tinggi tanaman (cm)
Dosis PGPR (g/5 L) Waktu Perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 1.99 2.50 3.68 2.72a 25 3.31 2.77 3.14 3.07a 50 3.23 3.18 2.85 3.09a Rerata 2.84a 2.81a 3.23a (-)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyata menurut uji DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor (+) terjadi interaksi.

## Jumlah Daun (Helai)
Daun  sangat  berhubungan  dengan  aktivitas  fotosintesis,  karena mengandung klorofil  yang  diperlukan oleh tanaman  dalam  proses  fotosintesis, semakin banyak jumlah daun maka  hasil fotosentesis semakin tinggi, sehingga tanaman tumbuh dengan baik ( Ekawati, M 2006 ). Analisis sidik ragam (Anova) menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi  (P>0.05)  antara  perlakuan  dosis  PGPR dengan  waktu  perendaman  terhadap  parameter  jumlah  daun.  Aras  perlakuan dosis PGPR maupun waktu perendaman menghasilkan jumlah daun yang tidak berbeda nyata antara aras perlakuan. Namun perlakuan yang memberikan nilai jumlah  daun terbanyak adalah  perlakuan dosis PGPR 50  gram  yaitu  sebanyak 4.32 helai dan perlakuan waktu perendaman 90 menit dengan nilai jumlah daun terbanyak yaitu 4,28 cm ( Tabel 8 ).
Tabel 8. Jumlah daun Dosis PGPR (g/5 L) Waktu perendaman (menit) Rerata 90 120 150 0 3.90 4.05 4.56 4.17a 25 4.32 4.29 4.13 4.24a 50 4.63 4.39 3.94 4.32a Rerata 4.28a 4.24a 4.21a (-)
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  sama  pada  baris  dan  kolom  menunjukkan  tidak berbeda nyata menurut uji     DMRT ɑ 0,05. (-) tidak terjadi antar faktor.

## 3.2. Pembahasan
PGPR  merupakan  salah  bahan  organik  hayati  yang  mampu  memberikan pertumbuhan  serta  hasil  pada  tanaman  yang  baik.  Hasil  sidik  ragam  anova menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi  antara  perlakuan  dosis  PGPR  dan  lama perendaman  benih  cabai  rawit  lokal  terhadap  setiap  parameter,  namun  terjadi interaksi  pada  parameter  potensi  tumbuh  maksimum.  Pada  parameter  daya berkecambah,  indeks  vigor,  kecepatan  tumbuh,  dan  keserempakan  tumbuh perlakuan  tanpa  dosis  PGPR  memberikan  nilai  tertinggi  dibandingkan  aras perlakuan lainnya. Hal ini  dikarenakan  PGPR  merupakan  mikroba tanah  yang terdapat pada akar tanaman dan meningkatkan pertumbuhan dan perlindungan terhadap  patogen  tertentu  ( Loon,  2007 )  dan  jika  dibandingkan  dengan penelitian yang dilakukan adalah proses perkecambahan didalam laboratorium yang  mana  tanpa  menggunakan  tanah  (kertas  CD)  sebagai  media  tumbuh sehingga  pengaruh  PGPR  terhadap  benih  yang  dikecambahkan  tidak  terlihat dan  mengakibatkan  perlakuan  kontrol  memberikan  nilai  tertinggi.  Hal  ini dikarenakan bakteri yang terkandung dalam PGPR tidak memilki tempat untuk hidup  dan  selanjutnya  mensintesis  zat  pengatur  tumbuh  yang  penting  dalam mempercepat perkecambahan.
Perkecambahan adalah peroses pengaktifan kembali aktifitas pertumbuhan  aksis  embriotik  di  dalam  biji  yang  terhenti  untuk  kemudian membentuk bibit ( Hardi, 2005 ). Menurut Spaenen et al ., (2009) PGPR mampu menghasilkan hormon tumbuh seperti auksin, giberelin dan sitokinin. Menurut Krishnamoorthy,  (1981) hormon  giberelin  berperan  sebagai  katalisator  dalam perubahan pati menjadi glukosa yang oleh benih digunakan untuk pertumbuhan dan  perkembangan  embrio  menjadi  kecambah.  Pada  perlakuan  lama perendaman  120  dan  150  menit  memberikan  nilai  tertinggi  dibandingkan perlakuan  lama  perendaman  90  menit  hal  ini  dikarenakan  semakin  lama perendaman  berlangsung  maka  air  akan  masuk  kedalam  benih  dan  terjadinya proses  imbibisi  pada  kulit  benih  sehingga  benih  dapat  berkecambah.  Pada parameter BKKN perlakuan kontrol memberikan nilai tertinggi yaitu 0.10 gram sedangkan  lama  perendaman  perlakuan  120  menit  memberikan  nilai  tertinggi yaitu  0.07  gram.Menurut Tefa,  (2017) ,  benih  yang  memiliki  vigor  tinggi mampu menghasilkan berat kering kecambah normal yang tinggi pada kondisi optimum dan sub optimum. Pada parameter pertumbuhan yaitu tinggi tanaman dan jumlah daun tidak terjadi interaksi (P>0.05) antara perlakuan dosis PGPR dan lama perendaman benih cabai rawit lokal. Pada perlakuan dosis PGPR 50 gram memberikan nilai tertinggi pada parameter tinggi tanaman yaitu 3.09 cm dan jumlah daun terbanyak yaitu 4.32 helai.
Khalimi  dan  Wirya  (2009) menyatakan    bahwa  perlakuan  PGPR  juga mampu  meningkatkan  jumlah  daun  maksimal  pada  pertumbuhan  tanaman kedelai.  Sedangkan  pada  perlakuan  lama  perendaman  150  menit  pada  tinggi memberikan  nilai  tertinggi  pada  parameter  tinggi  tanaman  dan  90  menit memberikan nilai tertinggi pada parameter jumlah daun. Hal ini didukung oleh Oedjijono et  al .  (2012) ,  bahwa  bakteri azospirilium  spp .  secara  nyata memberikan pertumbuhan tanaman jagung, terutama dalam peningkatan tinggi tanaman  dan  diperkuat  oleh  penelitian Khalimi  dan  Wirya  (2009) ,  bakteri p.aureginosa yang  terkandung  dalam  PGPR  mampu  memacu  pertumbuhan tanaman  kedelai  atau  dapat  digunakan  sebagai  biostimulan  dibandingkan dengan  proses  perkecambahan  pada  parameter  pertumbuhan  PGPR  mampu memberikan nilai tertinggi dikarenakan pada masa pertumbuhan tanaman telah berada  di  tanah  sehingga  proses  sintesis  ZPT  seperti  auksin  sitokinin  dan giberelin  berjalan  lancar.  Menurut A’yun  (2013) mekanisme  PGPR  secara langsung  dengan  mensintesis  metabolit  misalnya  senyawa  yang  merangsang pembentukan fitohormon seperti IAA, atau dengan meningkatkan pengambilan nutrisi  tanaman,  IAA  dijumpai  pada  tanaman  dan  berperan  aktif  dalam meningkatkan kualitas dan hasil panen

## 4. Simpulan
Respon  benih  cabai  rawit  lokal  terhadap  dosis  PGPR  dan  waktu perendaman  menunjukkan  tidak  terjadi  interaksi  tetapi  terjadi  interaksi  pada parameter  Potensi  Tumbuh  Maksimal.Perlakuan  tanpa  PGPR  (Kontrol) memberikan  hasil  terbaik  dan  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  PGPR  pada parameter  pengamatan indeks vigor,  berat kering kecambah normal  sedangkan parameter  pengamatan  lain  tidak  berbeda  nyata.Perlakuan  lama  waktu perendaman  PGPR  terhadap  benih  cabai  tidak  berbeda  nyata  kecuali  pada parameter pengamatan indeks  vigor  dengan lama  waktu perendaman 90  menit maupun pada parameter pengamatan berat kering kecambah normal yang tidak berbeda nyata dengan lama perendaman 120 menit.

## Pustaka
Alif,  S.  (2017).  Kiat  Sukses  Budidaya  Cabai  Keriting.  Yogyakarta:  Bio Genesis.
A’yun KQ (2013) Pengaruh Penggunaan Plant Growth Promoting Rizobakteria Terhadap  Intensitas  TMV  (Tobacco  Mosaic  Virus),  Pertumbuhan, Dan Produksi Pada Tanaman Cabai Rawit (Capsicum frutescens L.) J HPT 1(1):47-56.S
Azad,  MS,  Zedan-Al-Musa,  M  &  Matin,  MA  2010,  Effects  of  pre-sowing treatments  on  seed  germination  of  Melia  azedarach,  Journal  of Forestry Research, 21(2):193–196.
Baskin ,  C.C.  dan  Baskin.  J.M.  2005.  Dormansi  Benih  di  Pohon-pohon  dari Jenis Vegetasi Tropis Klimaks. Ekologi Tropis 46 (1): 17-28.
Barchenger, D.W. and P.W. Bosland. 2016 Exogeneus applications of capsaicin inhibits  seed  germennation  of capsicum  annum .  Sciientia Horticulturae (203):29-31.
Cahyono,  Bambang.  (2003).  Cabai  Rawit  Teknik  Budi  Daya  dan  Analisis Usaha Tani. Yogyakarta : Kanisius.
Danuarti 2005. Analisis Benih. Kanisius. Yogyakarta.
Ekawati,  M.  2006.  Pengaruh  Media  Multipikasi  Terhadap  Pembentukan  Akar dan  Tunas  in  Vitro  Nenas  (Ananas  Comosus  L  merr)  cv.  Smooth Cayeene  pada  Media  Penangkaran.  Skripsi  Jurusan  Budidaya Pertanian. Fakultas Pertanian. Institut Pertanian Bogor.
Figueiredo, Seldin, Araujo dan Mariano. 2010. Rhizobacteria Mempromosikan Pertumbuhan  Tanaman:  Dasar-Dasar  dan  Aplikasi.  Mikrobiologi Monografi 18: 21-43.
Hardi,  T,  TW.  2005.  Daya  kecambah  dan  Daya  Tumbuh  Biji  Sengon  Yang Disimpan  Selam  Tiga  Belas  Tahun  Dalam  tempat  Penyimpanan Dingin  Kering.  Wana  Benih,  6  (1)  :82-125.  Pusat  Penilitian  dan pengembangan Hutan Tanaman, Yogyakarta
Ilyas.  2012.  Kinerja,  Teori,  Penilaian  san  Penelitian.  Jakarta:  Pusat  Kajian Ekonomi Kesehatan FKM Universitas Indonesia.
Jäkel, N., & M. Witzler. 2018. Influence of germination aids on germination of different  Capsicum  sp.  American  Journal  of  Experimental Agriculture. 20(3): 1-7.
Justice,  Oren  L  dan  Bass,  Luis  N.  2002  Prinsip  dan  Praktek  Penyimpanan Benih. Jakarta: PT. Raga Grafindo Persada.
Khalimi  K  dan  G.  N  Alit  Susanta  Wirya.  2009.  Pemanfaatan  plant  growth promoting  rizobakteria  untuk  biostimulan  dan  bioprotektan. ECOTROPHIC. 4(2):131-135.
Krishnamoorthy, H.N. 1981. Substansi pertumbuhan tanaman termasuk aplikasi dalam  pertanian.  Tata  Mc.  Graw  Hill,  Publishing  Co.  Ltd.,  New York. 50 p
Lensari,  D.  2009.  Pengaruh  Pematahan  Dormansi  terhadap  Kemampuan Perkecambahan Benih Angsana (Pterocarpus indicus Will.). Skripsi. Departemen  Silvikultur.  Fakultas  Kehutanan.  Institut  Pertanian Bogor. Bogor.
Mousavi,  SR,  Rezaei,  M  &  Mousavi,  A  2011,  A  general  overview  on  seed dormancy  and  methods  of  breaking  it,  Advancesin  Environmental Biology, 5(10):3333–3337.
Oedjijono,  U.  W.  Lestanto,  E.K.  Nasution  dan  Bondansari.2012.  Pengaruh Azospirilium  spp. Terhadap  pertumbuhan  Tanaman  Jagung  ( Zea mays  L. )  dan  Kemampuan  Beberapa  Isolat  Dalam  Mengahasilkan IAA. Dalam Prosiding Seminar Nasional.
Olmez,  Z.,  F.  Temel.,  A.  Gokturk  dan  Z.  Yahyaoglu.  2007.  Pengaruh  Asam Sulfat dan Pretreatment Stratifikasi Dingin terhadap Perkecambahan Pomeganate (Punica granatum L). J. Asian Journal of Plant Sciences 6 (2): 427-43.
Quintaro, M. F. C., G.C. Oscar, D.S. Pablo, M.S. Jose, I.G.C. Ana, dan M.G.P. Jose.  2018.  Improving  dormancy  and  germantioan  of  piquin  chili peper  ( Capsicum  annunm  var.  glabriusculum )  by  priming techniques. J Coget Food & Agriculture. 4(1): 1-14
Rahni,  N.M  .2012.  Efek  Fitohormon  PGPR  Terhadap  Pertumbuhan  Tanaman Jagung (Zea mays). J Agribisnis dan Pengembangan
Wilayah.3(2):27-35.
Rahayu  A.  2013.  Viabilitas  dan  vigor  benih  aren  (Arenga  pinnata)  akibat pematahan  dormansi  melalui  skarifikasi  secara  fisik  dan  kimia [skripsi]. Banda Aceh (ID): Universitas Syiah Kuala.
Sadjad, S. 1993. Dari Benih kepada Benih. Jakarta: PT. Gramedia Sadjad, S. 1994. Metode Uji Langsung Viabilitas Benih. Bogor. IPB. Sandi  ALI, Indriyanto, Duryat. 2014.  Ukuran  benih  dan  skarifikasi  dengan  air panas  terhadap  perkecambahan  benih  pohon  kuku  (Pericopsis mooniana). J. Sylva Lestari. 2 (3): 82-92.
Schimint, L. 2000. Pedoman Penanganan Tanaman Hutan tropis dan Suptropis. Derektorat  Jendral  Rehabilitasi  Lahan  dan  Perhutanan  Sosial. Departemen Kehutanan. Buku. Gramedia. jakarta. 185 p.
Siginingsih, 2014. Pengaruh perlakuan awal terhadap kecepatan perkecambahan  dan  prosentase  kecambah  benih  kemiri.  (jurnal online) diakses pada minggu, tanggal 17-10-2019.
Sombalatu.I., Irvan.L., Evi.R. 2017. Lama penyimpanan terhadap perkecamabahan  benih  cabai  rawit.  Jurnal  Biology  science  dan Education. Makasar. 6(2):138-147.
Sutopo, L. 2004. Teknologi Benih. CV Rajawali. Jakarta.
Sitompul, S. M. dan Guritno, B. 1995.  Analisis Pertumbuhan Tanaman.  UGM Press: Yogyakarta.
Spaenen,  S.,  J.  Vanderleyden.,  Y.  Okon.  2009.  Plant  Growth-Gromoting Actions of Rhisobacteria. Adv Botl Res 51: 283-320.
Tefa,  A.  2017.  Uji  Viobilitas  dan  Vigor  Benih  Padi  ( Oryza  Sativa  L .)  Pada Tingkatan  Kadar  Air  Yang  Berbeda.  Jurnal  Pertanian  Konservasi Lahan Kering 2(3):48-50.
Van  Loon  LC.  2007.  Plant  responses  to  plant  growth-promotingrhizobacteria. Eur J Plant Pathol 119:243-254
Winarni  E.  2010.    Daya  berkecambah  benih  tanjung  pada  berbagai  kadar  air benih. Jurnal Hutan Tropis. 11 (30) : 12-24.