## POTENSI MIKROBA ASAL MIKROORGANIME LOKAL DALAM MENINGKATKAN PERKECAMBAHAN BENIH PAPRIKA
( The Potentials of Local Origin Microorganism in Improving Sweet Pepper’s Seed Germination )
Abdul Hasyim Sodiq 1* , Mieke Rochimi Setiawati 2 , Dwi Andreas Santosa 3 , Dedi Widayat 2
1 Staf Pengajar Jurusan Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Sultan Ageng Tirtayasa Jl. Raya Jakarta Km 4 Pakupatan Serang Banten
2 Staf Pengajar Jurusan Agroteknologi Fakultas Pertanian Universitas Padjadjaran
Jl. Raya Jatinangor Km.12 Sumedang Jawa Barat
3 Staf Pengajar Departemen Ilmu Tanah dan Sumberdaya Lahan, Fakultas Pertanian Institut Pertanian Bogor Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga Bogor, 16680 *e-mail korespondensi: abdul_hasyimsodiq@yahoo.co.id

## ABSTRACT
This  experiment  was  continues  from  the  study  of  biological  fertilizers  potential’s local  microorganisms  from  the  best  main  raw  materials  obtained  from  previous experiments.  This  experiment  used  five  selected  raw  materials  to  make  local microorganisms,  including:  bamboo  roots,  broccoli  leaves,  chicken  manure,  rabbit manure and goat manure, each raw material was made 2 times so that there were 10 local  microorganisms samples. The results showed that the  highest of total  bacterial population  were  shown  by  local  microorganisms  goat  manure  with  a  value  of  7.2  x 10 5 cfu/ml, then the highest population of Azotobacter and Azospirillium were shown by local microorganisms rabbit manure with values of 6.4 x 10 4 cfu/ml and 3.5 x 10 3 cfu/ml  and  total  fungi  populations  was  local  microorganisms  goat  manure  with  a value  of  4.7  x  10 3 propagules/ml.  In  the  pathogenicity  test,  9  nine  bacterial  isolates were  obtained,  25 Azotobacter isolates,  15 Azospirillium isolates  were  proven  to provide negative responses to the pathogenicity test. Furthermore, in the seed nursery test,  only  33  microbial  isolates  were  obtained  which  could  support  the  growth  of paprika seeds with the best results were shown by aquadest water control, 4B-1 NFB, 5A-1 NFB, and 1A-2 NFB isolates respectively.
Keywords:  local  microorganisms,  total  bacteria,  azotobacter,  azospirillium, total fungi.

## PENDAHULUAN
Salah satu upaya untuk menjaga  kesehatan  dan  kesuburan tanah  dari  kejenuhan  penggunaan pupuk  kimia  yang  berlebihan  perlu dicari  alternatif  penggunaan  pupuk yang  ramah  lingkungan.  Salah  satu pupuk  yang  dapat  digunakan  adalah pupuk  Mikroorganisme  Lokal  atau biasa  disebut  petani  dengan  MOL. Bahan-bahan  yang  sangat  mudah
didapat
membuat
sebagian  besar  petani  dapat  dengan mudah  membuat  pupuk  MOL  dan diaplikasikan  pada  tanaman  yang mereka  budidayakan  (Rahmah et  al.,
2019).  Kualitas  MOL  yang  baik banyak  mengandung  mikroorganisme bermanfaat,  sehingga  dapat  menjadi
alternatif sumber agen hayati komersial  yang  berfungsi  sebagai
pupuk hayati ( biofertilizer ).
Pupuk hayati didefinisikan sebagai zat yang mengandung
mikroorganisme hidup dan bila
diterapkan  pada  benih,  permukaan
tanaman atau tanah dapat berkolonisasi dengan  rhizosfer  atau  bagian  dalam tanaman dan mendorong pertumbuhan tanaman
dengan
meningkatkan
pasokan atau
ketersediaan nutrisi utama bagi tanaman inang (Vessey, 2003). Pemanfaatan mikrob penghasil hormon  juga  telah  banyak  dilakukan, seperti Azotobacter chroococcum memiliki kemampuan dalam menambat N 2 , menghasilkan zat pengatur  tumbuh  seperti  giberelin  dan sitokinin,  dan  memproduksi  siderofor
(Hindersah, 2004). Bakteri
Azotobacter dan Azospirillum dapat memacu pertumbuhan tanaman
melalui fiksasi nitrogen, dan menghasilkan  hormon  pertumbuhan seperti  auksin,  giberelin,  dan  sitokinin (Nasahi,  2010 dalam Kartikawati et al .,  2016).  Untuk  itu  pada  penelitian ini dicoba melihat potensi mikroorganisme asal MOL petani desa Cibodas    sebagai  pupuk  hayati  dalam meningkatkan  perkecambahan  benih paprika unggul.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  dilaksanakan  pada bulan  Maret-April  2019,  pembuatan MOL  di  lakukan  pada  rumah  plastik ( green house ) Kelompok Tani
Macakal,
Cibodas-Lembang.
Pelaksanaan analisis dan isolasi
mikroorganisme,  uji  hemolisis,  uji patogenitas dan aplikasi mikroorganisme  non  patogen  pada benih paprika dilakukan di Laboratorium Balai Besar Bioteknologi dan Sumberdaya Genetik (BB-Biogen) Cimanggu, Bogor.
Lima  bahan  baku  utama  untuk membuat  MOL,  diantaranya:  akar
bambu  ( Gigantochloa  apus L.),  daun brokoli ( Brassica oleracea L.),
bonggol pisang ( Musa paradisiaca L.),
kotoran ayam dan urine kelinci. Bahan baku  utama  lalu  ditambahkan  sumber glukosa  (air  gula  dengan  pengenceran 3  kg  pada  3  liter  air)  dan  air  cucian beras.  Ember  volume  10  liter,  pH meter,  alat  pengukur  suhu,  saringan, pisau/golok  untuk  mencacah,  sarung tangan,  dan  masker.  Juga  alat  dan bahan analisis di laboratorium.
Cara pembuatan
mikroorganisme  lokal,  yaitu  2  kg bobot  basah  bahan  baku  dihaluskan
dengan dicacah dicacah hingga ukuran maksimal  10  mm  kemudian  dicampur dengan  4  liter  air  gula  lalu  direndam dengan  4  liter  air  cucian  beras  dalam wadah  plastik  volume  10  liter.  Wadah ditutup  dengan  kertas  lalu  disimpan selama 14 hari, setelah MOL
tercampur secara homogen lalu disaring dan kemudian dimasukkan ke dalam botol plastik steril sebanyak 250 ml  dilabel  dan  disimpan  dalam cool box untuk dianalisis di laboratorium.
Selanjutnya  guna  mengetahui total populasi bakteri, populasi Azotobacter, populasi Azospirillium , total fungi, uji hemolisis, uji patogenitas  dan  kemampuan  mikroba terpilih  dalam  mendukung  persemaian benih paprika maka dilakukan serangkaian  analisis  seperti  disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1. Rangkaian uji mikroba asal mikroorganisme lokal.
Parameter Metode/Media Satuan Total bakteri Nutrient Agar CFU ml -1
Azotobacter LG CFU ml -1 Azospirillium Nitrogen Free Bromothymol blue CFU ml -1 Total fungi PDA Propagul ml -1 Uji Hemolisis Blood agar +/- Uji Patogenitas Daun tembakau +/-

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Populasi Total Bakteri, Azotobacter, Azospirillium, Total Fungi Analisis populasi mikroorganisme potensial diawali
dengan  melakukan  pengamatan  total populasi bakteri dan dilanjutkan
pengamatan populasi Azotobacter,
Azospirillium dan  total  fungi . Adanya
kekeruhan  larutan  dan  terbentuknya gas merupakan akibat respirasi mikroba  yang  terjadi.  Sejalan  dengan pendapat  Saraswati et  al .  (2007), bahwa  pertumbuhan  mikrob  ditandai dengan  terjadinya  kekeruhan  dan  gas pada  media  cair  dan  terbentuknya koloni mikrob pada media padat. Hasil selengkapnya disajikan pada Tabel  2.
Tabel 2. Hasil pengamatan populasi total bakteri, azotobacter, azospirillium , dan total fungi. No. Kode Sampel Populasi (CFU ml -1 )/ (Propagul ml -1 ) Total Bakteri Azotobacter Azospirillium Total Fungi 1 1A Akar bambu 5,5 x 10 5 0,7 x 10 4 3,3 x 10 2 3,3 x 10 3 2 1B Akar bambu 2,0 x 10 4 2,4 x 10 4 0,4 x 10 2 2,9 x 10 3 3 2A Daun brokoli 2,7 x 10 5 - 0,4 x 10 2 1,9 x 10 3 4 2B Daun brokoli 0,8 x 10 4 - - 1,9 x 10 3 5 3A Kotoran ayam 3,5 x 10 5 0,7 x 10 4 3,3 x 10 2 - 6 3B Kotoran ayam 3,3 x 10 5 1,7 x 10 4 3,3 x 10 2 4,1 x 10 3 7 4A Kotoran kelinci 8,4 x 10 4 2,1 x 10 4 3,3 x 10 2 2,0 x 10 3 8 4B Kotoran kelinci 2,1 x 10 5 6,4 x 10 4 3,5 x 10 3 2,2 x 10 3 9 5A 6,3 x 10 5 1,9 x 10 4 2,2 x 10 2 4,7 x 10 3
Kotoran kambing 10 5B Kotoran kambing 7,2 x 10 5 2,7 x 10 4 0,6 x 10 2 3,1 x 10 3 Penggunaan isolat mikroorganisme  lokal  ( indigenous ) lebih dianjurkan dalam seleksi inokulasi pada tanaman karena mikroorganisme tersebut telah
beradaptasi  dengan  kondisi  ekologi setempat  dibandingkan  dengan  strain non-indigenous  (Bhattarai  and  Hess dalam Kizilkaya,  2008).  Studi  lain menunjukkan bahwa Azotobacter tidak hanya  efektif  untuk  fiksasi  N  namun juga  dapat  memproduksi  hormon tumbuh, bahan fungisida, siderofor dan mampu  melarutkan  fosfat  (Jalilian et al .,  2012 dalam Maman et  al .,  2012).
Beberapa  penelitian  (Simarmata et  al.
2004; Maslahat dan Suharyanto, 2005) telah  membuktikan  bahwa  mikroba
penghasil  hormon  tumbuh  sangat bermanfaat untuk memacu pertumbuhan tanaman. Hasil perhitungan populasi total bakteri, Azotobacter, Azospirillium dan total fungi berdasarkan  pengamatan  bentuk  dan perkembangan isolat terbaik,
kemudian diambil  tiga isolat baik dari
total bakteri, Azotobacter ,
Azospirillium dan  tiga  propagul  total fungi  sehingga  dengan  10  sampel MOL  didapat  90  isolat  bakteri  dan  30 propagul  fungi  untuk  selanjutnya dilakukan serangkaian uji lanjutan.
Uji  Hemolisis  dan  Uji  Patogenitas

## Bakteri
Pengujian  hemolisis  digunakan untuk  mengetahui  isolat  berpotensi patogen  atau  tidak  baik  pada  manusia maupun  hewan.  Isolat  ditumbuhkan pada  media Blood  Agar (Difco,  2009) yang telah dicampur darah domba 5%. Pengujian menggunakan control positif    bakteri  patogen  pada  manusia atau hewan. Setelah diinkubasi selama 18-24  jam  pada  suhu  ruang,  apabila ada  zona  bening  di  sekeliling  koloni, menunjukkan isolat berpotensi sebagai patogen (Difco, 2009).
Agar  darah  merupakan  media differensial untuk membedakan bakteri berdasarkan  kemampuan  melisiskan sel  darah  merah.  Karakterisasi  sifat
hemolysis  bakteri  dilakukan  dengan menginokulasikan  satu  ose  isolat  pada
permukaan media agar darah domba, kemudian diinkubasikan  pada  suhu  37°C  selama 18-24 jam. Pengamatan karakter hemolisis
didasarkan  atas  bentuk  zona  hemolisis di sekeliling koloni bakteri (Balashova et al. 2006).
Isolat tidak berpotensi Patogen (A) Isolat berpotensi sebagai patogen (B)
Gambar. 1 Uji hemolisis pada media blood agar.
Yeh et  al. (2009)  menyatakan bahwa  sifat  hemolisis  ada  tiga  tipe, yaitu alpha, beta, dan gamma. Gamma hemolisis berarti sel darah merah tidak mengalami lisis dan tidak ada perubahan  medium  di  sekitar  koloni.
Alpha hemolisis  yaitu sel darah merah mengalami lisis dengan reduksi
hemoglobin  menjadi  methemoglobin
dan  menghasilkan  lingkaran  kehijauan di  sekitar  zona  pertumbuhan  bakteri. Beta hemolisis adalah sel darah merah mengalami lisis dan dilengkapi  kerusakan  dan  penggunaan hemoglobin oleh organisme,
menghasilkan zona bening di
sekeliling koloni.
Pada  pengujian  patogenitas atau respons hipersensitif menggunakan daun tembakau menurut Schaad et al. (2001) yang dimodifikasi,  untuk  mengetahui  isolat
berpotensi sebagai patogen pada tanaman  atau  tidak.  Isolat  dengan kerapatan  10 5 CFU  ml -1 dalam  media
cair disuntikkan (tanpa jarum) ke daun tanaman tembakau ( Nicotiana tabacum L.) berumur 3 bulan menggunakan syringe 1  ml  dan diamati sampai 48 jam. Kontrol negatif menggunakan  air  steril  dan  kontrol
positif dengan bakteri patogen tanaman.
Pada uji hipersensitifitas, isolat bakteri  diinokulasikan  ke  media  NB selama  2  hari.  Suspensi  bakteri kemudian  disuntikkan  pada  sisi  absial daun tembakau.
Pengamatan  dilakukan  setelah  48  jam dengan  melihat  gejala  nekrotik  pada daun  tembakau.  Dalam  pelaksaan  uji ini  disertakan  juga  kontrol  positif (bakteri patogen) agar terlihat perbedaan  yang  jelas  pada  hasil  akhir pengujian. A Isolat tidak berpotensi Patogen (-) B Isolat berpotensi sebagai patogen (+) Gambar 2. Uji patogenitas pada daun  tembakau Hipersensitif  merupakan  reaksi inang terhadap adanya serangan patogen. Reaksi ini biasanya menyebabkan  kematian  sebagian  sel inang yang bertujuan untuk menghambat  pertumbuhan  patogen (Lindsay et al., 1993; Arwiyanto et al.,
2007). Hasil uji hemolisis dengan agar darah  dan  uji  hipersensitivitas  dengan daun tembakau menghasilkan 49 isolat bakteri  yang  tidak  patogen  terhadap hewan,  manusia  dan  vegetasi.    Hasil
uji  hemolisis  dan  patogenitas  dapat
dilihat pada Tabel 3. Tabel 3. Hasil Pengamatan Uji Hemolisis dan Uji Hipersensitif Bakteri. No.  Kode Isolat Hasil Uji Kode Hasil Uji Kode Hasil Uji Isolat Isolat Bakteri 1 Na-1A.1 + + Na-IA.2 + + Na-IA.3 + + 2 Na-1B.1 + + Na-IB.2 + + Na-IB.3 + + 3 Na-2A-1 + + Na-2A.2 + + Na-2A.3 + + 4 Na-2B.1 - - Na-2B.2 + + Na-2B.3 - - 5 Na-3A.1 + + Na-3A.2 + + Na-3A.3 + + 6 Na-3B.1 - - Na-3B-2 + + Na-3B-3 - - 7 Na-4A.1 - - Na-4A-2 + + Na-4A-3 - - 8 Na-4B.1 - - Na-4B.2 - - Na-4B.3 - - 9 Na-5A.1 + + Na-5A.2
+ + Na-5A.3 + + 10 Na-5B.1 + + Na-5B.2 + + Na-5B.3 + + Azospirillium 1 NF-1A.1 - - NF-1A.2 - - NF-1A.3 + + 2 NF-1B.1 - - NF-1B.2 - - NF-1B.3 - - 3 NF-2A.1 + + NF-2A.2 - - NF-2A.3 - - 4 NF-2B.1 + + NF-2B.2 - - NF-2B.3 + + 5 NF-3A.1 - - NF-3A.2 - - NF-3A.3 - - 6 NF-3B.1 - - NF-3B.2 - - NF-3B.3 - - 7 NF-4A.1 - - NF-4A.2 - - NF-4A.3 - - 8 NF-4B.1 - - NF-4B.2 - - NF-4B.3 - - 9 NF-5A.1 - - NF-5A.2 - - NF-5A.3 - - 10 NF-5B.1 + + NF-5B.2 - - NF-5B.3 - - Azotobacter 1 LG-1A.1 - - LG-IA.2 + + LG-IA.3 + + 2 LG-1B.1 - - LG-IB.2 + + LG-IB.3 - - 3 LG-2A-1 - - LG-2A.2 + + LG-2A.3 + + 4 LG-2B.1 - - LG-2B.2 + + LG-2B.3 + + 5 LG-3A.1 + + LG-3A.2 - - LG-3A.3 + + 6 LG-3B.1 + + LG-3B-2 - - LG-3B-3 - - 7 LG-4A.1 - - LG-4A-2 + + LG-4A-3 - - 8 LG-4B.1 - - LG-4B.2 - - LG-4B.3 - - 9 LG-5A.1 - - LG-5A.2 + + LG-5A.3 + + 10 LG-5B.1 - - LG-5B.2 + + LG-5B.3 + + Hasil pada Tabel 3 menunjukkan trend apabila pada media agar  blood  menunjukkan  respons negatif  maka  pada  daun  tembakau
akan negatif pula. Hal ini menunjukkan  bahwa  bila  isolat  tidak patogen  pada  hewan  dan  manusia kemungkinan  besar  juga  tidak  akan patogen pada tumbuhan. Infeksi patogen melalui lenti sel (stomata) dan luka  mudah  terjadi,  tetapi  infeksi langsung  patogen  lebih  sulit  terjadi.
Kemampuan
patogen dalam
menginfeksi  secara  langsung  terjadi apabila  patogen  memiliki  enzim  yang dapat  masuk  ke  dalam  benih  seperti
patogen antraknosa. Patogen ini
mampu  menguraikan  dinding  sel inang,  sehingga  memudahkan  patogen masuk ke dalam jaringan dan menginfeksi  inang  (Soesanto,  2006
dalam Sukmadewi, 2017).
Aplikasi  Mikroba  pada  Uji  Daya

## Kecambah Benih Paprika
Uji  kemampuan  mikroba  yang
sudah  terbukti  non  patogen  baik
terhadap hewan, tumbuhan dan manusia  dilanjutkan  dengan  uji  daya dukung  pada  fase  perkecambahan benih  paprika.  Uji  dilakukan  dengan memberikan  suspensi  isolat  mikroba sebanyak 10 5 CFU ml -1 dan diaplikasikan  pada  10  benih  paprika unggul  di  cawan  petri  yang  sudah dilapisi kertas saring, inkubasi dilakukan  selama  14  hari  karena hingga  7  hari  pengamatan  belum menunjukkan pertumbuhan yang optimal.
Berikut hasil pengamatan pertumbuhan  benih  paprika  dari  49 isolat  yang  diuji  hanya  33  isolat  yang menunjukkan pertumbuhan benih
paprika,  selengkapnya  disajikan  pada Tabel 4.
Tabel 4. Hasil Pengamatan daya dukung mikroba terhadap cabai paprika.
No. Kode Isolat Jumlah Kecambah Tumbuh Rata-Rata Petri 1 Petri 2 Petri 3 1 4B-2 LG 6 3 3 4,00 2 4B-3 LG 6 4 6 5,33 3 4A-1 LG 5 5 4 4,67 4 3B-3 LG 8 5 5 6,00 5 3A-1 NFB 6 5 7 6,00 6 2A- 2 NFB 1 0 2 1,00
7 1B-3 LG 4 5 7 5,33 8 3A-2 LG 7 5 7 6,33 9 3B-2 LG 6 7 8 7,00 10 5A-2 NFB 6 8 7 7,00 11 2B-2 NFB 4 5 3 4,00 12 5B-1 LG 5 7 7 6,33 13 4A-1 NFB 8 4 9 7,00 14 5A-3 NFB 6 2 6 4,67 15 3B-2 NFB 5 6 5 5,33 16 3B-1 NFB 6 8 8 7,33 17 4A-2 NFB 7 4 5 5,33 18 3B-3 NFB 7 6 5 6,00 19 5A-1 NFB 7 8 8 7,67 20 3B-3 NFB 7 6 5 6,00 21 1B-3 NFB 6 5 8 6,33 22 3A-3 NFB 7 9 6 7,33 23 1A-2 NFB 6 8 8 7,33 24 1B-2 NFB 6 7 5 6,00 25 1A-1 NFB 3 3 5 3,67 26 2A-3 NFB 7 8 5 6,67 27 4B-2 NFB 4 6 6 5,33 28 4B-3 NFB 6 7 7 6,67 29 4B-1 NFB 7 9 7 7,67 30 3A-1 NFB 7 7 6 6,67 31 5B-2 NFB 6 7 8 7,00 32 1B-1 NFB 4 7 6 5,67 33 4A-3 NFB 5 9 6 6,67 34 Air 10 9 9 9,33 Keterangan: NFB = Azootobacter ; LG = Azospirillium
Hasil  pengamatan  perlakuan kontrol  menggunakan  air  aquades steril  menunjukkan  hasil  terbaik  yaitu hampir  tumbuh  dominan  9,33.  Hal  ini menunjukkan  bawasannya  benih  yang dipakai dalam uji ini memiliki kemampuan  tumbuh  di  atas  90%, berturut-turut  selanjutnya  hasil  terbaik ditunjukkan  dengan  nilai  7,67  oleh  2
isolat dan 7,33 isolat berikutnya. Isolat tersebut  ialah:  5A-1  NFB,  4B-1  NFB dan 1A-2 NFB.
Hasil  uji  kemampuan  isolat dalam  persemaian  paprika  dengan hasil  terbaik  pada  perlakuan  kontrol (air),  menunjukkan  bahwa  aplikasi mikroba  belum  tentu  memberikan dampak  positif  pada  benih  unggul
karena  benih  unggul  kemungkinan besar  sudah  memiliki  fitohormon
indeginous  yang  dapat  mendukung pertumbuhannya
sehingga tidak
merespons kedatangan fitohormon
baru  yang  dibawa  oleh  isolat  mikroba asal  MOL.  Hal  tersebut  menunjukkan ada  potensi  isolat  mikroba  digunakan pada benih-benih yang belum memiliki kemampuan optimal pada masa perkecambahan sehingga dapat mengakibatkan  pertumbuhannya  lebih baik  lagi  dengan  aplikasi  isolat
mikroba.
Hasil  penelitian  Sutariati  dan
Safuan  (2012),  dimana  penggunaan rizobakteri Bacillus  polymixa BG25,
Pseudomonas  fluorescens PG01  dan
Serratia  liquefaciens SG01  efektif meningkatkan kualitas benih, pertumbuhan dan hasil cabai, sehingga
potensi perbaikan kualitas benih
dengan aplikasi mikroba pada
perkecambahan  memang  masih  perlu terus  diteliti.  Menurut  Setiawati et  al.
(2018)  benih  bermutu  dari  varietas unggul  merupakan  salah  satu  faktor
yang mempengaruhi keberhasilan produksi  di  bidang pertanian termasuk cabai merah.

## SIMPULAN
1. Hasil perhitungan populasi total  bakteri  didapat  hasil terbaik  oleh  MOL  kotoran kambing dengan hasil 7,2 x 10 5
CFU  ml -1 ,  Sedangkan  populasi
Azotobacter dan Azospirillium hasil  terbaik  ditunjukkan  oleh MOL  kotoran  kelinci  dengan hasil  6,4  x  10 4 CFU  ml -1 dan 3,5 x 10 3 CFU ml -1 .
Pengamatan total populasi fungi  hasil  terbaik  ditunjukkan oleh  MOL  kotoran  kambing dengan nilai  4,7 x 10 3 propagul ml -1 .  Pada  uji  patogenitas didapat  9  isolat  bakteri,  25 isolat Azotobacter ,  15  isolat
Azospirillium yang  terbukti memberikan  respons  negatif pada uji patogenitas.
2. Pada  uji  aplikasi  mikroba  pada perkecambahan  benih  didapat hanya  33  isolat  mikroba  yang dapat mendukung pertumbuhan benih  paprika  unggul  dengan hasil  yang  terbaik  ke-1,  2,  3 dan  4  ditunjukkan  oleh  kontrol air  aquades,  4B-1  NFB,  5A-1 NFB, 1A-2 NFB.

## SARAN
Penelitian  dapat  dilanjutkan  dengan aplikasi  mikroba  pada  benih-benih
yang perlu diperbaiki kualitas
perkecambahannya.

## DAFTAR PUSTAKA
Arwiyanto.  T.,  Maryudani,  Y.M.S., Prasetyo, A.E. 2007. Karakterisasi  dan  Uji  Aktivitas Bacillus spp.  sebagai  Agensia Pengendalian  Hayati  Penyakit Lincat pada Tembakau Temanggung. Berk Penel Hayati. 12: 93-98. Balashova, N.V., Crosby, J.A., Ghofaily,  L.A.,  Kachlany,  S.C. 2006. Leukotoxin Confers Beta-Hemolytic Activity to Actinobacillus actinomycetemcomitans . Infection  Commun. 74  (4): 2015-2021. Difco. 2009. Manual of Microbiological Culture Media. Zimbro  MJ,  Power  DA,  Miller SM,  Wilson  GE,  Johnson  JA, editor. Ed ke-2. Becton, Dickinsonand Company. Maryland. Hindersah,  R.,  T.  Simarmata.  2004. Potensi Rizobakteri Azotobacter dalam Meningkatkan Kesehatan Tanah. J Nature Indones . 5 (2):
127-133.
Kartikawati, A., Trisilawati, O.,
Darwati,  I.  2017.  Pemanfaatan Pupuk  Hayati  ( Biofertilizer )  pada
Tanaman  Rempah  dan  Obat. J. Perpektif . 16 (1): 33-43.
Kizilkaya.  R.  2008.  Yield  Response and  Nitrogen  Concentrations  of Spring Wheat  ( Triticum aestivum ) Inoculated with Azotobacter chroococcum . J. Ecological Engineering 33: 150-156. Lindsay,  W.P.,  Lamb,  C.J.,  Dixon, R.A. 1993. Microbial Recognition and  Activation  of  Plant  Defence System. Trends  Microbiol. 5  (1):
181-187.
Maman,  H.,  Sasmita,  K.D.,  Pranowo,
D.  2012.  Pemanfaatan  Mikroba Rizosfer untuk Meningkatkan
Pertumbuhan  dan  Serapan  Hara pada  Tanaman  Lada. Buletin
Ristri 3 (2): 143-150.
Maslahat,  M.,  Suharyanto.  2005.
Produksi Indol  Asetic  Acid (IAA) oleh Bakteri yang Diisolasi dari Akar Tanaman Karet ( Hevea brasiliensis ).
Fakultas  MIPA  Universitas  Nusa Bangsa,  Bogor, Jurnal  Nusa Kimia 5 (2): 26-35.
Rahmah,  F.D.A.,  Arifin,  M.Z.,  Anam, K.  2019.  Proses  Adopsi  Inovasi Pupuk Organik Cair Mikro Organisme Lokal (MOL) di Kelurahan  Gebang  Kecamatan Patrang  Kabupaten  Jember. J. Agrica . 12 (1). Saraswati, R., Husen, E., Simanungkalit, R.D.M. 2007. Metode Analisis Biologi Tanah.  Jakarta  (ID):  Balai  Besar Litbang  Sumberdaya  Pertanian. Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Departemen Pertanian. 270p. Schaad,  N.W.,  Jones,  J.B.,  Chun,  W. 2001. Plant Patogenic Bacteria. Ed ke-3. The
Minnesota: American Phytopatological Society. Setiawati,  M.R.,  Suryatmana,  P., Sofyan, E.T. 2018. Respons
Tanaman Cabai Merah ( Capsicum annum L.)  yang  Diaplikasikan Bakteri  Endofitik  Diazotrof  dan Pupuk N terhadap Populasi Endofitik  Diazotrof,  Konsentrasi N,  dan  Bobot  Kering  Tanaman pada  Inceptisols  Jatinangor. J.
Agroekotek 10 (2): 1-9. Simarmata, T., Hindersah, R., Setiawati,  M.R.,  Fitriani,  B., Suriatmana,  P.,  Sumarni,  Y., Arief, D.H. 2004. Strategi Pemanfaatan  Pupuk  Hayati  CMA dalam Revitalisasi Ekosistem Lahan  Marjinal  dan  Tercemar. Workshop Produksi Inokulan CMA . 22-23 Juli 2004. Sukmadewi, D.K.T., Anas, I.,
Widyastuti,  R.,  Citraresmini,  A.
2017. Uji Fitopatogenitas, Hemolisis dan Kemampuan Mikroba dalam Melarutkan Fosfat dan  Kalium. Jurnal  Ilmu  Tanah dan Lingkungan . 2: 68-73.
Sutariati,  G.A.K.,  L.O.  Safuan.  2012. Perlakuan Benih dengan Rizobakteri  Meningkatkan  Mutu Benih dan Hasil Cabai ( Capsicum annuum L.). J.  Agron.  Indonesia
40: 125-131.
Vessey,  J.K.  2003.  Plant  Growth
Promoting Rhizobacteria as
Biofertilizers.  Plant  Soil  255  :
571-586. Yeh,  T.E.,  Pinsky,  B.A.,  Banaei,  N., Baron  E.J.  2009.  Hair  Sheep Blood, Citrated or Defibrinated, Fulfills All Requirements  of  Blood  Agar  for Diagnostic Microbiology Laboratory Tests. Plos One. 4 (7):
1-8.