## UJI DAYA HAMBAT LENDIR BEKICOT (Achatina fulica)

## TERHADAP PERTUMBUHAN BAKTERI Staphylococcus aureus
dan Salmonella typhi
Kasih Purwati 1 ,Sukma Sahreni 2 ,Dhea Fajria Khasanah 3
1 Fakultas Kedokteran Universitas Batam, kasihpurwati@univbatam.ac.id
2 Fakultas Kedokteran Universitas Batam, sukmasahreni@univbatam.ac.id
3 Fakultas Kedokteran Universitas Batam, dheafkhasanah27@gmail.com

## ABSTRACT
Background: Snail mucus (Achatina fulica) contains achasin protein which can inhibit the growth of Staphylococcus aureus and Salmonella typhi bacteria. This study aims to determine the effect of snail mucus (Achatina fulica) on the growth of Staphylococcus aureus and Salmonella typhi bacteria.
Methods: This research is an experimental research using Posttest Only Control Group Design as the research design. This research was conducted at the Microbiology Laboratory, Riau University, from December  16,  2021  to  January  11,  2022.  The  population  of  this  study  was  pure  culture  of Staphylococcus aureus and Salmonella typhi. The sample consisted of 30 snails which had previously been  adapted  for  1  month.  The  negative  control  group  was  only  given  distilled  water,  the  positive control group was given amoxicillin, treatment group 1 was given snail slime with a concentration of 30%,  treatment  group  2  was  given  snail  slime  with  a  concentration  of  60%,  and  treatment  group  3 was given snail mucus with a concentration of 90%. The result of this research will be analyzed using statistical test, ANOVA.
Results: There is an inhibition of snail mucus (Achatina fulica) against the growth of Staphylococcus aureus  and  Salmonella  typhi  bacteria.  The  most  effective  results  in  inhibiting  the  growth  of Staphylococcus aureus and Salmonella typhi bacteria is at a concentration of 90%.
Conclusion: Based on the results of this study, it can be concluded that snail mucus (Achatina fulica) can significantly inhibit the growth of Staphylococcus aureus and Salmonella typhi bacteria.
Keywords: Snail mucus (Achatina fulica), Staphylococcus aureus, Salmonella typhi.

## ABSTRAK
Latar  Belakang: Lendir  bekicot (Achatina  fulica) mengandung  protein achasin yang  dapat menghambat  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi .  Penelitian  ini bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh  lendir  bekicot (Achatina fulica) terhadap  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi.
Metode: Penelitian ini merupakan penelitian eksperimen dengan rancangan penelitian adalah Posttest Only Control Group Design . Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Mikrobiologi Universitas Riau pada  tanggal  16Desember  2021  sampai  11Januari  2022.  Populasi  di  dalam  penelitianadalah  biakan murni  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella typhi . Sampel  berjumlah  30  ekor  bekicot  yang sebelumnya  sudah  diadaptasi  selama  1  bulan.  Kelompok  kontrol  negatif  hanya  diberi  aquades, kelompok  kontrol  positifdiberi  amoxicillin,  kelompok  perlakuan  1  diberi  lendir  bekicot  dengan konsentrasi 30%, kelompok perlakuan 2 diberi lendir bekicot dengan konsentrasi 60%, dan kelompok perlakuan  3  diberi  lendir  bekicot  dengan  konsentrasi  90%.  Analisis  hasil  menggunakan  uji  statistik ANOVA.
Hasil: Terdapat  daya  hambat  lendir  bekicot (Achatina  fulica) terhadap  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi .Hasil  paling  efektif  dalam  menghambat  pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi pada konsentrasi 90%.
Kesimpulan: Berdasarkan  hasil  penelitian  ini  dapat  disimpulkan  bahwa  lendir  bekicot (Achatina fulica) dapat  menghambat  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi secara signifikan.
Kata Kunci: Lendir Bekicot (Achatina fulica),Staphylococcus aureus, Salmonella typhi.

## PENDAHULUAN
Penyakit yang menjadi salah satu masalah kesehatan di seluruh dunia termasuk Indonesia ialah  penyakit  infeksi.  Hal  ini  menjadi penyebab utama meningkatnya angka morbiditas  dan  mortalitas.  Penyakit  infeksi disebabkan  oleh  mikroba  diantaranya  virus, jamur,  dan  bakteri  (Solikhah  &  Maratus, 2018). Bakteri  menjadi  penyebab  utama terjadinya  penyakit  infeksi.  Hal  ini  tidak terlepas  dari  peran  bakteri  patogen  yang menyerang  manusia.  Bakteri  sendiri  dapat digolongkan  menjadi  2,  yaitu  bakteri  gram positif  dan  bakteri  gram  negatif.  Bakteri  dapat digolongkan  berdasarkan  hasil  dari  pewarnaan gram.  Dari  pewarnaan  gram  ini  pula  dapat terlihat  bagaimana  bentuk  dari  bakteri,  seperti berbentuk  bulat,  batang,  ataupun  spiral. Contoh  bakteri  gram  positif  yang  berbentuk bulat adalah Staphylococcus aureus , sedangkan  contoh  bakteri  gram  negatif  yang berbentuk batang adalah Salmonella typhi .
Studi  epidemiologi  menunjukkan  bahwa infeksi  akibat Staphylococcus  aureus di  dunia meningkat  pada  dua  dekade  terakhir  serta perkiraan terbaru menunjukkan bahwa Salmonella  typhi menyebabkan  13,5  juta penyakit  secara  global  pada  tahun  2010. Tingkat  insiden  tertinggi  demam  akibat Salmonella  typhi telah  tercatat  di  Afrika  dan Asia.  Data  di  Asia Salmonella  typhi dan Staphylococus aureus memiliki angka kejadian infeksi  yang  hampir  sama  banyak  (Intan, 2017). Indonesian  One  Health  University Network (INDOHUN)  melaporkan  bahwa spesies Salmonella menempati peringkat
ketiga  presentasi  tertinggi  penyebab  utama penyakit  yang  menular  melalui  makanan  baik pada  manusia  maupun  hewan  (Lestari  et  al., 2017).
Indonesia termasuk negara beriklim tropis yang memiliki potensi alam sangat besar untuk digali  berbagai  manfaat  flora-fauna  di  bidang kesehatan.  Diantaranya  bekicot (Achatina fulica) atau  hewan  yang  dianggap  menjijikkan karena  memiliki  lendir.  Saat  ini  masyarakat cenderung memanfaatkan bahan-bahan alamiah  sebagai  pengganti  pengobatan  kimia, termasuk penggunaan beberapa jenis tumbuhan  dan  hewan  sebagai  obat-obatan tradisional. Penyembuhan dengan lendir bekicot  bisa  menjadi  salah  satu  alternatif karena  mudah  dalam  penggunaan,  daya sebarnya  pada  kulit  baik,  tidak  menyumbat pori-pori  kulit,  juga  memiliki  efek  antibakteri (Purnasari et al., 2012).
Bekicot termasuk binatang lunak (mollusca), yang  diklasifikasikan  ke  dalam kelas  gastropoda  (Rahmdina,  2019). Lendir bekicot  diproduksi  di  dinding  tubuh  bekicot dan  zat  getah  beningLendir  bekicot  yang mengalir  dalam  tubuh  bekicot  mempunyai aktivitas  pembasmian  bakteri  dan  benda  asing (Megawati,  2015). Kandungan  lendir  bekicot terdiri  dari  proteoglikan,  glikosaminoglikan, enzim  glikoprotein,  hyaluronic  acid,  copper peptides,  ion  metal,  dan  peptida  antimikrobia (Achasin)  (Jacub,  2019). Achasin ini  bekerja dengan  cara  menyerang  atau  menghambat pembentukan  bagian-bagian  yang  umum  dari strain bakteri seperti, lapisan peptidoglikan dan membran  sitoplasma.  Lapisan  peptidoglikan adalah  lapisan  pembentuk  dinding  sel,  dimana
dinding  sel  pada  bakteri  berperan  sangat penting  untuk  menahan  tekanan  osmose  dari luar.  Protein achasin pada  lendir  bekicot mempunyai  fungsi  biologik  penting,  antara lain  sebagai  reseptor  pengikat  protein  (enzim) bakteri.  Protein  achasin  akan  mengikat  protein (enzim)  yang  ada  pada  bakteri  dan  akan menggangu  aktivitas  enzim  tersebut,  sehingga pada  saat  terjadi  infeksi,  bakteri  yang  akan melakukan  proses  replikasi  akan  gagal  untuk memisah  karena  dicegah  oleh  protein achasin, septum  tidak  terbentuk  dan  memisah  menjadi sel anak (Anggraeni, 2017).
Pengembangan suatu alternatif pengobatan  yang  tidak  menyebabkan  efek samping  dengan  memanfaatkan  bahan-bahan alam  perlu  dilakukan.  Berdasarkan  penelitian Permadani  lendir  bekicot (Achatina  fulica) konsentrasi  80%  menunjukkan  hasil  yang signifikan dalam  menghambat aktivitas bakteri Staphylococcus aureus (Permadani, 2019). Hal tersebut  ditandai  dengan  adanya  zona  hambat yang  terbentuk  pada  sekeliling  cawan  petri. Sedangkan  penelitian  yang  dilakukan  oleh Misbahul  Hudayaitu  konsentrasi  efektif  lendir bekicot (Achatina  fulica) terhadap Salmonella typhi adalah  60%  sampai  100%.  Hasil penelitian  keduanya  menunjukkan  bahwa semakin  tinggi  konsentrasi  lendir  bekicot (Achatina  fulica) maka  zona  hambat  yang terbentuk  semakin  besar  yang  berarti  semakin efektif dalam menghambat pertumbuhan bakteri (Huda, 2016).
Berdasarkan  uraian  di  atas,  maka  perlu untuk  dilakukan  penelitian  dengan  ruang lingkup  mengukur  kemampuan  lendir  bekicot (Achatina fulica) dalam menghambat
pertumbuhan  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella typhi.
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui pengaruh  lendir  bekicot (Achatina  fulica) terhadap  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  ini  dilakukan  dengan  metode eksperimental  murni  laboratoris “Posttest Only Control Group Design” . Pada penelitian ini  populasi  yang  digunakan  adalah  biakan murni  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella typhi yang diperoleh dari
Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas Riau. Sampel berjumlah  30  ekor  bekicot  yang  sebelumnya sudah diadaptasi selama 1 bulan.
PenelitianinidilaksanakandiLaboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas Riau  pada  tanggal  16  Desember  2021–  11 Januari 2022.
Variabel  bebas  dalam  penelitian  ini adalah lendir bekicot (Achatina fulica) dengan konsentrasi  30%,  60%,  dan  90%  yang mempengaruhi  daya  hambat  bakteri.  Variabel terikat  dalam  penelitian  ini  adalah  daya hambat  lendir  bekicot (Achatina  fulica) terhadap Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi.
Alat  dan  Bahan  Penelitian. Alat  yang digunakan  antara  lain  dry  heat  oven,  autoklaf, kertas  saring  cakram/whatman,  timbangan, aluminium  foil,  erlenmeyer,  beaker,  cotton swab,  funnel  glass,  bunsen,  spoit,  vial,  jarum ose,  pipet  tetes,  caawan  petri,  pinset,  mistar, pH  meter.Bahan  yang  digunakan  antara  lain
lendir  bekicot (Achatina  fulica), media  MHA, biakan  bakteri Staphylococcus  aureus ,  biakan bakteri Salmonella typhi , Amoxicillin,
Aquades.
Sterilisasi  Alat  dan  Bahan. Semua  alat yang  digunakan,  terlebih  dahulu  disterilkan melalui  proses  sterilisasi  kering  dan  cara sterilisasi  basah.  Dilakukan  sterilisasi  ini bertujuan  untuk  menghilangkan  terjadinya kontaminasi.
Pembuatan  Media Mueller  Hinton Agar. Menurut  Snyder  dan  Atlas  (2006), pembuatan  Media  Mueller  HintonAgar  adalah sebagai  berikut  :  Ditimbang  38  gram  MHA (dengan  komposisi  :  Beef  dehydrate  infusion 300 g, Casein hydrolysate 17,5 g, Stratch 1,5 g dan  Agar  15  g)  dilarutkan  dalam  1  liter aquadest  didalam  erlenmayer.  Didihkan  diatas hot  plate  sampai  didapatkan  larutan  media menjadi  berwarna  kuning  jernih.  Ukur  pH sampai  7,4.  Masukkan  ke  dalam  cawan  petri steril  dengan  ketebalan  3-4  mm.  Cawan  petri ditutup  dengan  aluminium  foil  kemudian disterilisasi  dengan  autoklaf  selama  15  menit pada suhu 121ºC.
Peremajaan  Bakteri  Uji (Streak  Plate Method). Panaskan  jarum  ose  hingga  memijar di  atas  bunsen,  kemudian  beri  jarak  dari bunsen  dan  diamkan  hingga  dingin.  Gunakan ose  yang  telah  dingin  untuk  mengambil  kultur murni  bakteri  (ambil  sebanyak  1  ose). Goreskan  pada  permukaan  medium  agar dengan  menggunakan  teknik  goresan  kuadran. Ose  yang  disentuhkan  pada  permukaan medium sebaiknya tidak ditekan terlalu dalam. Setiap  kali  menggoreskan  ose  untuk  kuadran berikutnya,  pijarkan  ose  terlebih  dahulu  dan
biarkan  dingin.  Kemudian  diinkubasi  pada suhu 37ºC selama 24 jam.
Persiapan  Sampel. Pada  penelitian  ini digunakan sampel lendir bekicot
(Achatinafulica) sebanyak 30 ekor yang diperoleh  dari  perkebunan,  kota  Pekanbaru, provinsi  Riau.  Agar  komposisi  bekicot  tidak memiliki perbedaan yang signifikan, bekicot di karantina  dan  diberi  makanan  yang  sama dengan  habitat  asli  selama  1  bulan.  Bekicot dibersihkandari  kotoran  tanah  yang  melekat, kemudian  dicuci  dengan  air  mengalirhingga bersih  terutama  pada  bagian  cangkang  dan badan  bekicot (Achatinafulica). Selanjutnya bekicot  dibiarkanberaktivitas  seperti  biasa namundiletakkan pada tempat yang bersih.Kemudian bagian tubuh
bekicot (Achatina  fulica) diletakkan  jarum  ose steril yang bertujuanuntuk merangsang keluarnya  lendir  dari  tubuhbekicot  kemudian akandidapatkan lendir dari bekicot.
Sampel  yang telah didapat,  dipisah dalam 3  vial  (10  ml  per  vial)  dan  disimpan  pada tempat  yang  tertutup  danterhindar  dari  polusi udara  demi  menjaga  kualitas  kandungan  zat protein achasin pada  lendir  bekicot  yang  telah diperoleh.
Persiapan  Kertas  Cakram. Kertas cakram  yang  telah  disterilkan  diteteskan masing-masing  pengenceran  yang  akan  diuji dengan  berbagai  konsentrasi,  amoxicillin sebagai  kontrol  positif  dan  aquades  sebagai kontrol negatif.
Suspensi Bakteri. Dibuat suspensi bakteri  dengan  cara  biakan  kuman  yang  telah berumur 18-24 jam diambil beberapa sengkelit dan  dimasukkan  ke  dalam tabung reaksi berisi
5  ml  NaCl  0,9  %  steril  sehingga  kekeruhan sebanding  dengan  suspensi  McFarland  0,5. Kemudian  dilakukan  pengenceran  dengan NaCl  0,9%  sebanyak  100  kali  sehingga diperoleh konsentrasi kuman 10 6
kuman/ 𝑚𝑙 10 .
Pengujian  Daya  Hambat. Cawan  petri dibagi  menjadi  5  bagian  yaitu  kontrol  positif, kontrol  negatif,  konsentrasi  30%,  60%,  dan 90%.  Secara  berturut-turut  setiap  cawan  petri akan  diletakkan  kertas  cakram  yang  telah berisi  kontrol  positif,  kontrol  negatif,  lendir bekicot (Achatina  fulica) konsentrasi  30%, 60%,  dan  90%.  Agar  diperoleh  kontak  yang baik,  kertas  cakram  dapat  ditekan  dengan lembut menggunakan pinset pada permukaannya. Setiap pergantian kertas cakram,  pinset  dibakar  ujungnya  untuk disterilkan menggunakan lampu  spiritus.
Cawan  petri  yang  telah  diberikan  perlakuan ditutup  atau  dibungkus  dengan  plastic  wrap kemudian  diinkubasikan  pada  suhu  37ºC
selama 1 x 24 jam.
Pengukuran Zona Hambat. Diameter zona  hambat  yang  terbentuk  yaitu  adanya ukuran daerah hambatan yang ditandai dengan terbentuknya  zona  atau  daerah  yang  jernih pada  media  pertumbuhan  bakteri  di  cawan petri.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Uji  daya  hambat  lendir  bekicot (Achatina fulica) terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi menunjukkan  adanya  zona  bening  sekitar kertas  cakram  yang  menandakan  terjadinya hambatan pertumbuhan bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi setelah  diberi  intervensi  dengan  lendir  bekicot (Achatina fulica) berbagai konsentrasi.
Berdasarkan hasil pengamatan dan perhitungan  diameter  rata-rata  zona  hambat setiap variasi konsentrasi menunjukkan adanya perbedaan  yang  dapat  dilihat  pada  tabel  1.
Tabel 1. Rataan diameter zona hambat lendir bekicot (Achatina fulica) terhadap bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi
Berdasarkan kultur biakan bakteri Staphylococcus  aureus terdapat  zona  hambat pada  seluruh  konsentrasi  lendir  bekicot.  Rata- rata zona hambat pada konsentrasi 30% adalah 11,62  mm,  konsentrasi  60%  sebesar  13,08
mm, dan konsentrasi 90% sebesar 15,94 mm. Menurut  Greenwood  et  al  (1995)  diameter zona  hambat  <10  mm  tidak  memiliki  respon hambatan  pertumbuhan,  10-15  mm  kategori lemah,  16-20  mm  kategori  sedang,  dan  >20
Konsentrasi (%)
Rataan Diameter Zona Hambat (mm) S.aureus S.typhi K+ 24,52 ± 0,64 45,18  ± 1,20 K 0,00  ± 0,00 0,00  ± 0,00 30 11,62  ± 0,21 11,12  ± 1,04 60 13,08  ± 0,13 18,30  ± 0,54 90 15,94  ± 0,83 20,42  ± 0,92
mm  kategori kuat. Hal ini  menunjukkan lendir bekicot  konsentrasi  30%,  60%  dan  90% termasuk  kategori  lemah  dalam  menghambat bakteri Staphylococcus aureus.
Selain  itu  dilakukan  penelitian  lendir bekicot terhadap bakteri Salmonella typhi, dan terdapat  perbedaan  yang  signifikan  di  tiap konsentrasi.  Dimana  didapat  rata-rata  zona hambat  pada  konsentrasi  30%  adalah  11,12 mm,  konsentrasi  60%  adalah  18,3  mm,  dan konsentrasi  90%  adalah  20,42  mm.  Menurut kategori  zona  hambat,  konsentrasi  30% termasuk  kategori  lemah,  konsentrasi  60% dalam kategori sedang, dan konsentrasi 90% termasuk  kategori  kuat  dalam  menghambat pertumbuhan bakteri Salmonella typhi.
Gambar 1. Kelompok perlakuan dan kontrol bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi
Kelompok  kontrol perlakuan pada bakteri Staphylococcus  aureus termasuk  kategori lemah  dalam  menghambat  pertumbuhan  dan pada  bakteri Salmonella  typhi kategori  lemah hingga  kuat,  artinya  lendir  bekicot (Achatina fulica) sudah  bisa  menghambat  pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi yang  ditandai  adanya  zona  bening disekitar  cakram,  hal  ini  terjadi  karena  lendir bekicot  memiliki  kandungan  proteoglikan, glikosaminoglikan, enzim glikoprotein, hyaluronic acid, peptida antimikroba
( achasin ),  copper  peptides,  dan  ion  metal. Protein achasin pada lendir bekicot mempunyai fungsi biologik penting,antara lain sebagai  reseptor  pengikat  protein  (enzim) bakteri.  Protein achasin akan  mengikat  protein (enzim)  yang  ada  pada  bakteri  dan  akan menggangguaktivitas enzim tersebut, sehingga pada  saat  terjadi  infeksi,  bakteri  yang akanmelakukan proses replikasi  menjadi gagal untuk  memisah  karena  dicegah  olehprotein achasin ,  septum  tidak  terbentuk  dan  memisah menjadi  sel  anak  (Damayanti,  2020).  Hasil penelitian ini sejalan  dengan penelitian Kirana Aling  Permadani  (2019)  menunjukkan  bahwa lendir bekicot dapat menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus dengan konsentrasi terbaik adalah konsentrasi maksimal  dalam  penelitiannya  yaitu  80%, sedangkan  menurut  Misbahul  Huda  (2016) konsentrasi  efektif  terhadap Staphylococcus aureus adalah 90% sampai 100% dan terhadap
Salmonella typhi adalah 60% sampai 100%.
Kelompok kontrol positif memiliki perbedaan bermakna terhadap kelompok perlakuan  30%,  60%,  90%,  dan  terhadap kelompok kontrol negatif. Hal ini dapat terjadi karena  adanya  absorbsi  obat  yang  akhirnya mempengaruhi  daya  hambat  pada  bakteri. Penelitian  ini  sejalan  dengan  hasil  penelitian Citra  Dewi  et  al  (2018)  yang  menyebutkan bahwa  kontrol  positif  memiliki  daya  hambat lebih besar dibanding kelompok perlakuan, hal tersebut terjadi karena kontrol positif merupakan anitimikroba yang memiliki spektrum  luas  dan  aktivitasnya  lebih  besar terhadap organisme yang sensitif.
Berdasarkan  hasil  data  yang  diperoleh
pada  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi setelah  diberi  perlakuan  dan kontrol,  diketahui  kelompok  kontrol  negatif memiliki perbedaan bermakna terhadap kelompok  kontrol  positif,  kelompok  kontrol negatif  tidak  memiliki  efek  daya  hambat terhadap  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi. Hal  tersebut  terjadi  karena pada  kelompok  kontrol  negatif  hanya  diberi aquades, artinya kertas cakram tidak mengandung antibakteri apapun yang memungkinkan  bakteri  tetap  tumbuh  dengan normal, sehingga daya hambat pada kelompok kontrol negatif tidak ada.
Dalam  penelitian  yang  telah  dilakukan  ini, hasil pengukuran menunjukkan adanya perbedaan  rata-rata  diameter  zona  hambat yang  signifikan.  Semakin  tinggi  konsentrasi lendir bekicot (Achatina fulica) , maka semakin besar  zona  hambat  yang  terbentuk.  Zona hambat  yang  terbentuk  membuktikan  adanya zat-zat aktif  yang  terdapat  pada  lendir  bekicot (Achatina  fulica) yang  berfungsi  sebagai  zat antimikroba.  Namun  besarnya  zona  hambat yang  terbentuk  oleh  lendir  bekicot (Achatina fulica) belum  bisa  menyamai  daya  hambat kontrol  positif  yaitu  amoxicillin.  Dalam penelitian  ini  zona  hambat  terbesar  lendir bekicot (Achatina  fulica) terbentuk  pada konsentrasi  90%  dengan  rerata  diameter  pada bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi secara  berturut  adalah  15,94  mm  dan 20,42 mm, sedangkan amoxicillin menghambat  bakteri Staphylococcus  aureus dan Salmonella  typhi secara  berturut  dengan rerata  diameter  24,52  mm  dan  45,18  mm. Terdapat  perbedaan  ukuran  yang  cukup  besar
terhadap  perlakuan  90%  dan  amoxicillin dengan  selisih  2-3  kali  lipat,  sehingga  untuk menyamai  efektifitas  amoxicillin  diperlukan konsentrasi  lendir  bekicot (Achatina  fulica) yang lebih besar.

## KESIMPULAN
1. Daya hambat setiap perlakuan menunjukkan  perbedaan  yang  signifikan dimana pada bakteri Staphylococcus aureus dengan konsentrasi 30% sebesar 11,62 mm,
60%  sebesar  13,08  mm  dan  90%  sebesar 15,94 mm.
2. Perbedaan  yang  signifikan  juga  terdapat pada  bakteri Salmonella  typhi konsentrasi 30%  sebesar  11,12  mm,  60%  sebesar  18,3 mm, dan 90% sebesar 20,42 mm.
3. Semakin  besar  konsentrasi  lendir  bekicot (Achatina fulica) maka semakin besar zona hambat  yang  dihasilkan.  Dalam  penelitian ini  zona  hambat  terbesar  terbentuk  pada konsentrasi  90%sebesar  15,94  mm  pada bakteri Staphylococcus  aureus dan  20,42 mm  pada  bakteri Salmonella  typhi .  Namun besarnya  daya  hambat  yang  dihasilkan lendir  bekicot (Achatina  fulica) masih dibawah  daya  hambat  kontrol  positif amoxicillin  sebesar  24,52  mm  pada  bakteri Staphylococcus aureus dan 45,18 mm pada bakteri Salmonella typhi.
4. Terdapat aktivitas antibakteri lendir bekicot
(Achatina fulica) dalam menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella  typhi, namun amoxicillin  lebih  efektif  dibanding  lendir bekicot (Achatina fulica) dalam
menghambat pertumbuhan bakteri
Staphylococcus  aureus dan Salmonella typhi.

## SARAN
1. Ada  baiknya  dilakukan  penelitian  lebih lanjut  mengenai  komponen  apa  saja  selain achasin pada  lendir  bekicot (Achatina fulica) yang  berperan  dalam  menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi .
2. Dapat  dilakukan  penelitian  lebih  lanjut menggunakan  bakteri  gram  positif  dan gram  negatif  selain  bakteri Staphylococcus aureus dan Salmonella typhi .
3. Peneliti  lain  dapat  mengombinasikan  jenis atau  ekstrak  lain  untuk  mendapatkan  daya hambat yang lebih maksimal.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis menghanturkan terimakasihkepada  dr.  Kasih  Purwati,  M.Kes dan  dr.  Sukma  Sahreni,  M.Gizi  yang  telah memberikan  banyak  bimbingan,  dorongan motivasi  dan  masukan  pada  penelitian  ini. Ucapan  terimakasih  juga  penulis  ucapkan kepada  dr.  Sudarsono,  Sp.KK  dan  dr.Andi Ipaljri  S.,  M.Kes  yangtelah  memberikan masukan dalam penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Anggraeni,  D.  (2017). Daya  AntiMikroba
Lendir Bekicot (Achatina fulica) Terhadap
Staphylococcus aureus.
Skripsi.  Universitas  Muhammadiyah
Semarang.
Damayanti,  N.,  Prasetyo  A.  N.,  Safitri,  N.  F.
A., Perdana, R., Setiawan, E., Ujilestari, T.  (2020). Analisis  Lendir  Bekicot
Sebagai  Obat  Alternatif  Bagi  Manusia. NECTAR:  Jurnal  Pendidikan  Biologi,
1(2), 9-13.
Dewi,  C.,  Saleh,  A.,  Awaliyah,  N.  H.,  &
Hasnawati, H. (2018). Evaluasi Formula Emulgel Lendir Bekicot (Achatina  fulica)  Dan  Uji  Aktivitas Antibakteri Terhadap Bakteri
Staphylococcus  epidermidis  penyebab jerawat .  Jurnal  Mandala  Pharmacon Indonesia, 4(02), 122-134.
Greenwood,  D.,  Slack,  R.,  Peutherer,  J.  and
Barer, M. (1995). Medical
Microbiology. China: Elsevier.
Huda,  M.  (2016). Effect  of  Snail  Mucus (Achatina  fulica)  on  The  Growth  Of
Positive Bacteria. Jurnal Analis Kesehatan Politeknik Kesehatan Tanjungkarang , 5 (2), 547–555.
Intan, K. S. (2017). Uji Efektivitas Antibiofilm Katekin  Gambir  (Uncaria  gambir)
Terhadap
Bakteri Staphylococcus aureus  Penghasil  Biofilm. Skripsi.
Universitas Andalas.
Jacub,  C.  (2019). Toksisitas  Senyawa  Bioaktif Dari  Lendir  Bekicot  (Achatina  fulica) Dengan  Metode  Brine  Shrimp  Lethality Test .  Skripsi.  Universitas  Atma  Jaya Yogyakarta.
Lestari, I. D. A. M. D., Hendrayan, M., Agus, M.  (2017). Identifikasi  Dan  Diagnosis
Infeksi Bakteri Salmonella typhi. Universitas Udayana, 32.
Megawati,  A.  N.  I.  (2015). Biokompatibilitas Ekstrak Lendir Bekicot (Achatina fulica) Pada Sel Fibroblas. Skripsi. Universitas
Airlangga.
Permadani,  K.A.  (2019). Uji  Daya  Hambat
Lendir Bekicot (Achatina fulica) Terhadap Aktivitas Bakteri Mycobacterium tuberculosis Dan Staphylococcus  aureus .  Karya  Tulis Ilmiah. Politeknik
Kesehatan
Palembang.
Purnasari,  P.  W.,  Fatmawati,  D.,  &  Yusuf,  I.
(2012). Pengaruh Lendir Bekicot
(Achatina  fulica)  terhadap  Jumlah  Sel
Fibroblas  pada  Penyembuhan  Luka Sayat. Sains Medika: Jurnal Kedokteran dan Kesehatan, 4(2), 195–203.
Rahmadina. (2019). Pengembangan Buku Ajar
Taksonomi Invertebrata . Medan:
Universitas  Islam  Negeri  Sumatera
Utara.
Solikhah,  &  Maratus,  A.  (2018). Analisis Profil  Protein  Staphylococcus  aureus Multidrug  Resistance  (MDR)  dengan SDS Page. Skripsi.
Universitas
Muhammadiyah Semarang.