http://ejurnal.polnep.ac.id/index.php/manfish
Volume 1 Nomor 3 - Maret 2021
DOI:

## EFEKTIVITAS PAPARAN SPEKTRUM LAMPU LED TERHADAP KINERJA PERTUMBUHAN DAN KUALITAS WARNA IKAN YELLOW PHANTOM (Hyphessobrycon roseus)
Wijianto 1 , Kukuh Nirmala 2 , dan Yuni Puji Hastuti 2
1 Mahasiswa Program studi Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor, Indonesia
2 Staf Pengajar di Program studi Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor, Indonesia
Email: wijiantowijianto61@gmail.com

## ABSTRAK
Ikan yellow  phantom merupakan  salah  satu  ikan  hias  introduksi  yang  memiliki  warna  tubuh kekuningan, sirip ekor berwarna kuning, dan terdapat ciri khas yaitu black spot dibagian sisi kanan dan kiri dibagian belakang insang. Penelitian ini bertujuan untuk mengevaluasi kualitas warna dan pertumbuhan  ikan yellow phantom dengan paparan spektrum cahaya berbeda. Ikan yellow phantom berukuran  2,73±0,13  cm  dengan  rataan  bobot  ikan  yaitu  0,38±0,05  g  dipelihara  dalam  akuarium berukuran 25×25×25 cm selama 21 hari. Pakan yang diberikan yaitu cacing sutera. Pakan diberikan tiga kali sehari secara at satiation . Pemeliharaan dilakukan dengan 5 perlakuan dan 3 ulangan yaitu perlakuan K (kontrol), M (LED merah), H (LED Hijau), P (LED Putih), dan B (LED Biru). Hasil penelitian  pada  perlakuan  LED  putih  memberikan  pengaruh  kualitas  warna  terbaik  berdasarkan keragaan warna secara visual sebesar 33,11±0,86% untuk warna hitam dan 37,91±0,76% untuk warna kuning. LED merah memberikan pertumbuhan terbaik dengan pertumbuhan panjang total 0,40±0,09 cm, laju pertumbuhan harian 1,20±0,19%, dan efisiensi pakan sebesar 0,68±0,14%. Kadar glukosa darah berkisar antara 28,33±3,05-51,33±3,21 mg dL -1 .
Kata Kunci : LED, pertumbuhan, kualitas warna, spektrum, yellow phantom

## PENDAHULUAN
Ikan yellow  phantom ( Hyphessobrycon roseus ) merupakan salah satu ikan hias dengan ukuran  3-4,5  cm  yang  bernilai  ekonomis tinggi.  Ikan yellow  phantom termasuk  dalam famili Characidae. Ciri khasnya yaitu memiliki warna tubuh  kekuningan, sirip  ekor berwarna kuning,  dan  terdapat  balck  spot  dibagian  sisi kanan dan kiri dibagian belakang insang. Ikan yellow  phantom merupakan  ikan  hias  yang cocok  dipelihara  di aquascape .  Hal  tersebuat disebabkan  ikan yellow  phantom merupakan ikan yang hidup berkoloni dan pergerakannya yang begitu menawan.
Ikan yellow phantom merupakan ikan hias introduksi  yang  berasal  dari  Amerika  Selatan (Axelrod et  al., 2004).  Saat  ini  ikan yellow phantom yang merupakan ikan hias introduksi sudah  dapat  dibudidayakan  di  Indonesia (Satyani & Subamia 2009).
Kendala  yang  dihadapi  dalam  kegiatan budidaya  ikan  hias yellow  phantom yaitu pertumbuhannya  yang  cenderung  lambat. Berdasarkan  penelitian  pertumbuhan  panjang ikan  cardinal  tetra  ( Paracheirodon  axelrodi ) selama pemeliharaan 39 hari hanya mencapai 0,66±0,16 cm (Nurhidayat et al., 2017). Upaya yang  dapat  dilakukan  yaitu  dengan  cara
memperbaiki sistem budidya dengan rekayasa lingkungan  budidaya  menggunakan  spektrum lampu LED.
Karakteristik  dari  sistem  pencahayaan meliputi  spektrum  (panjang  gelombang), fotoperiod  (lama  penyinaran),  dan  intensitas dapat memengaruhi respon fisiologis, reproduksi, dan pertumbuhan ikan baik secara langsung  maupun  secara  tidak  langsung (Bouef  &  Le  Bail  1999). Light  Emmiting Diode (LED)  digunakan  dalam  proses perbaikan  sistem  budidaya  ikan yellow phantom karena memiliki beberapa keunggulan.  Keunggulan  dari  lampu  LED dibandingkan  dengan  lampu  jenis  lainnya antara  lain  memiliki  daya  yang  relatif  kecil serta  lebih  efisien  (Medkour et  al., 2013). Beberapa penelitian yang telah dilakukan pada ikan rainbow bosemani ( Melanotaenia boesemani ),  lampu  LED  berwarna  merah memberikan pengaruh terbaik terhadap kualitas warna ikan rainbow dengan jumlah sel kromatofor  mencapai  461±11  sel.  Spektrum lampu  LED  berwarna  biru  memberikan pengaruh  terbaik  terhadap  pertumbuhan dengan laju pertumbuhan sebesar 0,65±1,12% (Adha, 2016).
Penggunaan  spektrum  LED  warna  biru, putih,  merah,  dan  hijau  telah  dilakukan  pada ikan botia ( Chromobotia macrachantus ) (Aras et al., 2015). Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan  spektrum  LED  merah  memberikan hasil  terbaik  untuk  memperbaiki  kualitas warna ikan botia yaitu dengan keragaan warna visual sebesar 75,22±2,69%. Kemudian perlakuan warna hijau memberikan perubahan pertumbuhan terbaik yaitu
sebesar 2,35±0,27%  dengan  pertumbuhan  bobot sebesar  0,030±0,003  g/ekor/hari  (Aras et  al ., 2015). Penggunaan fotoperiod 12 jam terbukti memberikan hasil terbaik
terhadap pemeliharaan  ikan  tengadak  dengan  laju pertumbuhan harian 5,64±0,23% dan efisiensi pakan 52,54±2,96 % (Nurdin 2014). Penelitian ini bertujuan untuk
mengevaluasi pertumbuhan  dan  kualitas  warna ikan  yellow phantom ( Hyphessobrycon  roseus )  dengan paparan spektrum cahaya berbeda pada media pemeliharaan.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  dilaksakan  pada  bulan  Maret sampai April 2019 bertempat di Laboratorium Lingkungan 3 Departemen Budidaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian  Bogor.  Ikan yellow  phantom phantom ( Hyphessobrycon  roseus )  dipelihara di  akuarium  percobaan  selama  21  hari. Perlakuan  spektrum  cahaya  LED  diberikan dengan  lama  penyinaran  12  jam.  Pakan  yang diberikan  yaitu  pakan  alami  berupa  cacing sutera dengan metode pemberian at satiation . Frekuensi  pemberian  pakan  sebanyak  3  kali sehari  yaitu  pada  pukul  08.00  WIB,  12.00 WIB, dan 16.00 WIB.
Pergantian air dilakukan setiap hari sekali pada pukul 08.00 WIB sebanyak 10% dari total volume  air  pada  akuarium  uji.  Pengisian  air baru  sebanyak  10%  dilakukan  dengan menggunakan  gayung  secara  perlahan  agar ikan  tidak  mengalami  stres.  Penelitian  ini menggunakan rancangan acak lengkap (RAL) yang  terdiri  atas  lima  perlakuan  dan  tiga ulangan.  Perlakuan  terdiri  atas  perlakuan kontrol  (K)  dengan  cahaya  ruang  perlakuan spektrum  lampu  LED  merah  (M),  spektrum lampu  LED  hijau  (H),  spektrum  lampu  LED putih (P), dan spektrm lampu LED biru (B).

## Tingkat Kelangsungan Hidup (TKH)
Tingkat  kelangsungan  hidup  merupakan hasil  perhitungan  dari  perbandingan  jumlah ikan yang hidup pada akhir pemeliharaan dan awal  pemeliharaan. Rumus  perhitungan tingkat  kelangsungan  hidup  ikan  sebagai berikut (Goddard 1996):
TKH (%) = 𝑁𝑡 𝑁𝑜 x 100
Keterangan :
TKH   : tingkat kelangsungan hidup (%)
Nt : jumlah ikan pada akhir pemeliharaan
No : jumlah ikan pada wal pemeliharaan

## Pertumbuhan Bobot (PB)
Pertumbuhan  mutlak  merupakan  hasil perhitungan  dari  selisih  bobot  rata-rata  akhir dengan  bobot  rata-rata  awal,  kemudian dibandingkan  dengan  lama  waktu  perlakuan.
Rumus  pertumbuhan  bobot  sebagai  berikut (Effendie 1979):

## PM = 𝑊𝑡 − 𝑊𝑜 𝑡
Keterangan : PM  : pertumbuhan mutlak (gram/ekor/hari) Wt   : bobot rata-rata hari ke-t (gram) Wo  : bobot rata-rata hari ke-0 (gram T     : lama perlakuan

## Pertumbuhan Panjang Total (PPT)
Pertumbuhan
panjang merupakan perubahan  panjang  yang  diukur  berdasarkan panjang  total.  Panjang  total  merupakan panjang yang diukur dari ujung mulut sampai ujung ekor ikan. Pengukuran panjang dilakukan  dengan  menggunakan  milimeter blok.  Rumus  pertumbuhan  panjang  sebagai berikut (Effendie 1979) :
PP = Pt – Po
Keterangan : PP :  pertumbuhan panjang (cm) Pt  :  panjang rata – rata individu pada hari  ke- t (cm)
Po :  panjang rata – rata individu pada hari ke-
0 (cm)

## Laju Pertumbuhan Harian (LPH)
Laju  pertumbuhan  harian  merupakan pertambahan  bobot  ikan  diukur  dengan menimbang  sampel  dari  masing-masing perlakuan  dengan  menggunakan  timbangan digital  dan  dihitung  rataannya.  Rumus  laju pertumbuhan harian (Huisman 1987):
α = (√ 𝑤𝑡 𝑤𝑜 𝑡 − 1) x 100
Keterangan : α : laju pertumbuhan harian (%) Wt : bobot rata-rata ikan ke-t (gram) Wo : bobot rata-rata ikan ke-0 (gram) t : lama pemeliharaan (hari)

## Jumlah Konsumsi Pakan (JKP)
Jumlah konsumsi pakan adalah banyaknya jumlah  pakan  yang  dihabiskan  selama perlakuan.  Jumlah  pakan  yang  dikonsumsi oleh ikan ditimbang setap memberikan pakan.
Rumus  perhitungan  jumlah  konsumsi  pakan sebagai berikut :
F = Jumlah pakan awal (g) – pakan sisa (g)

## Efisiensi Pakan (EP)
Efisiensi pakan merupakan parameter yang digunakan untuk mengetahui kemampuan ikan mengonsumsi  dan  mencerna  pakan  dari  total pakan  yang  diberikan.  Rumus  perhitungan efisiensi  pakan  dapat  dihitung  dengan menggunakan rumus berikut (Takeuchi 1988):
EP (%) = [(𝑊𝑡 + 𝑊𝑑) − 𝑊𝑜] 𝐹 × 100
Keterangan : EP  :    efisiensi pakan (%)
Wt  :  biomassa  ikan  pada  akhir  penelitian (gram)
Wd :  bimassa  ikan  mati  selama  penelitian (gram)
Wo :  biomassa ikan pada awal pemeliharaan
(gram)
F    :    jumlah pakan yang diberikan (gram)
Jumlah Sel Kromatofor Perhitungan jumlah sel kromatofor dilakukan diakhir pemeliharaan dengan mengambil bagian epidermis (kulit) dari tubuh ikan.  Metode  ini  menggunakan  teknik histologi dengan pewarnaan hematoksilin dan eosin.  Sampel  yang  digunakan  tiga  ulangan untuk  setiap  perlakuan.  Kemudian  sampel dipotong dengan ketebalan 0,6 μm. Kemudian setelah tahap histologi selesai preparat diamati dengan  menggunakan  mikroskop  dengan perbesaran  40x10  dan  dihitung  jumlah  sel kromatofornya. Luas daerah yang dihitung sel kromatofornya  yaitu  1  mm2  (Novita  et  al. 2019).

## Keragaan Warna Visual
Keragaan  warna  visual  dilakukan  dengan menggunakan  kamera  DSLR  ( Digital  Single- Lens Reflex ) 16 pixel pada akhir pemeliharaan. Pengambilan  gambar  dilakukan  sedemikian rupa sehingga pengambilan gambar menggunakan  kamera  sesuai  dengan  keadaan aslinya. Sampel foto ikan yang digunakan tiga ulangan  untuk  setiap  perlakuan.  Kemudian dianalisis  dengan  menggunakan  software
Adobe Photoshop seperti yang digunakan oleh penelitian  Aras et  al. (2015).  Pengamatan dilakukan  pada  bagian black  spot dan  sirip ekor  dengan  tiga  ulangan  foto  pada  setiap perlakuan.

## Glukosa
Pengukuran kadar glukosa darah pada ikan uji dilakukan dengan menggunakan glukometer  dan  strip glucotest .  Ikan  uji kemudian diambil darahnya dengan memotong tubuh bagian pangkal ekor. Kemudian setelah darahnya  keluar  diteteskan  ke  strip  glucotest sampai pangkal garis untuk menyimpan darah sampel  penuh.  Setelah  itu  strip glucotest dimasukan  kedalam glukometer. Bagian ujung dari  strip glucotest sensitif  sehingga  harus dijaga  agar  saat  pembacaan  hasil  pengukuran glukosa  darah  tidak  terjadi  error.  Kemudian ditunggu sebentar hingga hasilnya terbaca oleh glukometer.  Strip glucotest yang  digunakan sebanyak  15  buah  dan  masing-masing  strip hanya  dapat  digunakan  satu  kali  artinya  satu strip untuk satu sampel darah.

## Kualitas Fisika Kimia Air
Parameter kualitas air yang diukur meliputi suhu,  pH, Dissolved  Oxygen (DO),  Total Amonia Nitrogen (TAN), dan nitrit dilakukan pada  hari  ke-0,  7,  14,  dan  21.  Sampel  yang diambil  yaitu  satu  botol  sampel  setiap akuarium. Botol sampel yang digunakan untuk mengambil      air      sampel      dari      wadah
pemeliharaan  yaitu  dengan  volume  100  ml. Pengambilan sampel dilakukan pada pagi hari dengan  tujuan  air  dapat  diamati  langsung  di laboratorium Lingkungan.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Hasil Penelitian
Kinerja pertumbuhan ikan yellow phantom ( Hyphessobrycon  roseus )  yang  dipelihara dengan  paparan  spektrum  cahaya  berbeda dapat  dilihat  pada  Tabel  1.  Berdasarkan  hasil penelitian adanya perbedaan paparan spektrum cahaya  menunjukan  hasil  pertumbuhan  bobot (PB),  pertumbuhan  panjang  total  (PPT),  laju pertumbuhan  harian  (LPH),  jumlah  konsumsi pakan (JKP), dan efisiensi pakan (EP) berbeda nyata (P<0,05).
Pertumbuhan  bobot  tertinggi  yaitu  pada perlakuan  dengan  menggunakan  LED  merah yaitu  sebesar    0,0052±0,0009  g/ekor/hari, sedangkan pertumbuhan  bobot  terendah yaitu pada perlakuan kontrol sebesar 0,0009±0,0005 g/ekor/hari.  Pertumbuhan  panjang  tubuh tertinggi  yaitu  pada  perlakuan  LED  merah sebesar 0,41±0,06 cm, sedangkan pertumbuhan  panjang  tubuh  terendah  yaitu pada perlakuan kontrol sebesar 0,15±0,04 cm. Laju pertumbuhan harian (LPH) tertinggi yaitu pada  perlakuan  LED  merah  dengan  nilai sebesar 1,20±0,19%, sedangkan laju
pertumbuhan  terendah  yaitu  pada  perlakuan kontrol 0,23±0,14%.
Tabel 1. Data parameter pertumbuhan ikan yellow phantom ( Hyphessobrycon roseus )
Parameter Perlakuan Spektrum LED K M H P B TKH (%) 100±0,00 100±0,00 100±0,00 96,67±5,77 100±0,00 PB (g/ekor/ hari) 0,0009±0,0005 a 0,0052±0,0009 c 0,0025±0,0003 b 0,0025±0,0003 b 0,0021±0,0002 b PPT (cm) 0,15±0,04 a 0,41±0,06 c 0,31±0,03 b 0,33±0,02 b 0,31±0,02 b LPH (%) 0,23±0,14 a 1,20±0,19 c 0,60±0,09 b 0,61±0,08 b 0,52±0,05 b JKP (g) 12,53±1,23 a 16,14±0,45 b 12,80±1,01 a 13,96±0,33 a 13,45±0,36 a EP (%) 0,16±0,10 a 0,68±0,14 c 0,41±0,06 b 0,37±0,05 b 0,33±0,03 ab
Jumlah  konsumsi  pakan  tertinggi  yaitu pada perlakuan LED merah  yaitu dengan nilai sebar sebesar 16,14±0,45 g, sedangkan jumlah konsumsi  pakan  terendah  pada  perlakuan kontrol  dengan  nilai  sebesar  12,53±1,23  g. Efisiensi pakan tertinggi yaitu pada perlakuan spektrum  lampu  LED  merah  dengan  nilai sebesar  0,68±0,14%,  sedangkan  efisiensi pakan  terendah  yaitu  pada  perlakuan  kontrol yaitu dengan nilai sebesar sebesar 0,16±0,10%. Tingkat kelangsungan hidup ikan yellow  phantom  seperti  dapat  dilihat  pada Tabel  1.  Tingkat  kelangsungan  hidup  pada perlakuan  kontrol,  spektrum  lampu  LED merah,   spektrum   lampu    LED    hijau,   dan
spektrum  LED  biru  sebesar  100±0,00%, sedangkan  perlakuan  spektrum  lampu  LED putih dengan nilai sebesar 96,67±5,77%.

## Sel Kromatofor
Jumlah  sel  kromatofor  ikan yellow phantom selama  pemeliharaan  21  hari  dapat dilihat pada Gambar 1. Jumlah sel kromatofor tertinggi  yaitu  terdapat  pada  perlakuan spektrum lampu LED putih sebesar 196,7±15,3  sel  kromatofor.  Jumlah  sel kromatofor  terendah  terdapat  pada  perlakuan kontrol.  Hasil  pengamatan  menggunakan mikroskop  dengan  perbesaran  40x10  dapat dilihat  adanya  bintik-bintik  ungu  kehitaman yang merupakan sel kromatofor .
Gambar 1. Jumlah  sel  kromatofor  ikan  yellow  phantom  Hyphessobrycon  roseus  pada  perlakuan kontrol (K), spektrum lampu LED merah (M), spektrum lampu LED hijau (H), spektrum lampu LED putih (P), dan spektrum lampu LED biru (B)

## Keragaan Warna Visual
Keragaan  warna  ikan yellow  phantom ( Hyphessobrycon  roseus )  secara  visual  dapat dilihat  pada  Tabel  2.  Berdasarkan  hasil pengamatan  yang  telah  dilakukan  keragaan visual  warna  hitam  berkisar  dari  nilai 27,33±0,58-33,11±0,86%.  Keragaan  warna secara  visual  ikan yellow  phantom pada masing-masing  perlakuan  spektrum  lampu LED termasuk perlakuan kontrol menunjukan hasil yang berbeda nyata (P<0,05). Perlakuan spektrum lampu LED putih menunjukan hasil terbaik  untuk  meningkatkan  kualitas  warna ikan  yellow  phantom.  Keragaan  warna  visual
hitam  tertinggi  pada  perlakuan  spektrum lampu  LED  putih  sebesar    33,11±0,86  %, sedangkan  keragaan  warna  visual    hitam terendah yaitu pada perlakuan spektrum lampu LED hijau sebesar 27,33±0,58 %.
Keragaan  warna  kuning  secara  visual berkisar  dari  nilai  30,92±3,11-37,91±0,76  %. Keragaan warna kuning secara visual tertinggi yaitu  pada  perlakuan  spektrum  lampu  LED putih  sebesar  37,91±0,76  %,  sedangkan keragaan warna kuning secara visual terendah pada  perlakuan  spektrum  lampu  LED  biru dengan nilai sebesar 30,92±3,11 %. Tampilan visual ikan yellow phantom pada Gambar 2
0,00 50,00 100,00 150,00 200,00 250,00 K M H P B J um la h k ro m a to fo r (s el) Perlakuan
Gambar 2. Warna ikan yellow phantom secara visual pada ikan dengan perlakuan kontrol (K), LED merah (M), LED hijau (H), LED putih (P), dan LED biru (B)
Tabel 2. Keragaan warna secara visual ikan yellow phantom ( Hyphessobrycon  roseus )

## Kadar Glukosa
Kadar glukosa darah ikan yellow   phantom yang  dipelihara  dibawah  paparan  spektrum cahaya  yang  berbeda  dapat  dilihat  pada Gambar 3. Kadar glukosa darah tertinggi yaitu pada  perlakuan  LED  biru  yaitu  sebesar 51,33±3,21 mg dL -1 .

## Parameter Fisika Kimia Air
Parameter  fisika  kimia  air  pada  media pemeliharaan  ikan yellow  phantom selama pemeliharaan 21 hari dapat dilihat pada Tabel 3.  Suhu  pemeliharaan  berkisar  antara  27,9- 30,2 °C. pH selama  pemeliharaan ikan yellow phantom yaitu  berkisar  antara  6,8-7,2.  Kadar nitrit  selama  pemeliharaan  ikan yellow phantom berkisar antara 0,006-0,231 mg L-1. Total  amonia  Nitrogen (TAN)  selama
pemeliharaan  berkisar  antara  0,004-0,078 mgL -1 .

## Pembahasan
Pertumbuhan  bobot  (PBM)  tertinggi  yaitu pada perlakuan LED merah sebesar 0,0052±0,0009  g/ekor/hari.    Pertumbuhan bobot  ikan yellow  phantom pada  perlakuan LED  merah  berbeda  nyata  dengan  perlakuan lainnya (P<0.05). Hal tersebut dapat dibuktikan dari jumlah konsumsi pakan (JKP) yang  dimakan  oleh  ikan yellow  phantom tertinggi  pada  perlakuan  LED  merah.  Hasil tersebut sesuai dengan penelitian menggunakan  spektrum  lampu  LED  merah yang  menunjukan  rata-rata  bobot  akhir tertinggi  yaitu  sebesar  396,2±9,7%  pada  ikan rainbow trout ( Onchorhyncus mykiss ) (Karakatsouli et  al., 2008).  Penelitian  lain
Perlakuan Kualitas Warna Ikan Yellow Phantom (%) Warna Hitam Warna Kuning K 31,79±0,18 c 30,75±0,65 a M 30,01±0,38 b 36.06±0,74 b H 27,33±0,58 a 35,71±1,20 b P 33,11±0,86 d 37,91±0,76 c B 31,58±0,87 c 30,92±3,11 a
menunjukan  tingkat  kelangsungan  hidup  dan pertambahan  biomassa  tertinggi  ditunjukan pada  spekrum  lampu  LED  merah  pada pemeliharaan larva Wallango attu (Giri et al ., 2002).
Nilai  LPH  pada  perlakuan  LED  merah sebesar  1,20±0,19%  dan  berbeda  nyata (P<0,05) dengan perlakuan lainnya.
Penggunaan lampu LED merah telah dilakukan  pada  ikan  rainbow  trout  dan hasilnya menunjukan bahwa laju pertumbuhan spesifik  tertinggi  yaitu  pada  spektrum  lampu LED merah sebesar 0,87±0,01% (Karakatsouli et  al., 2008).  Berdasarkan  hasil  yang
didapatkan  dengan  perlakuan  paparan  LED, pertumbuhan panjang total (PPT) ikan yellow phantom tertinggi  yaitu  pada  perlakuan spektrum  lampu  LED  merah  0,41±0,06  cm. Pertumbuhan  panjang  total  pada  perlakuan LED  merah  berbeda  nyata  dengan  perlakuan spektrum  lampu  LED  lainnya  (P<0,05). Perlakuan LED merah pada ikan rainbow trout menunjukan hasil panjang total tertinggi yaitu sebesar  30.7±0,2  cm  dan  berbeda  nyata (P<0,05)  dengan  perlakuan  spektrm  lampu LED  putih  dan  spektrum  lampu  LED  biru (Karaktsouli et al., 2008).
Gambar 3. Kadar  glukosa  darah  ikan yellow  phantom ( Hyphessobrycon  roseus )  pada  perlakuan kontrol (K), spektrum lampu LED merah (M), spektrum lampu LED hijau (H), spektrum lampu LED putih (P), dan spektrum lampu LED biru (B).
Tabel 3. Parameter fisika kimia air pada media pemeliharaan ikan yellow phantom ( Hyphessobrycon roseus )
Parameter Perlakuan K M H P B Suhu (°C) 28,2-30,0 28,0-30,2 27,9-29,3 28,0-29,5 27,9-29,3 pH 6,9-7,2 6,8-7,1 6,9-7,1 6,8-7,1 6,8-7,1 Dissolved Oxygen (DO) (mg L -1 ) 4,5-5,6 4,6-5,8 4,5-6,0 4,4-5,3 4,4-5,8 Nitrit (mg L -1 ) 0,007-0,211 0,007-0,056 0,006-0,222 0,007-0,231 0,006-0,178 Total Amonia Nitorgen (mg L -1 ) 0,008-0,070 0,008-0,070 0,008-0,078 0,004-0,078 0,008-0,032
0,00 10,00 20,00 30,00 40,00 50,00 60,00 G lu k o sa d a ra h ( m g d L -1 ) Perlakuan
Efisiensi  pakan  ikan yellow  phantom dengan perlakuan spektrum lampu LED merah menunjukan  hasil  tertinggi  yaitu  sebesar 0,68±0,14%.  Ikan  rainbow  trout  yang  diberi perlakuan  LED  merah  memiliki  nilai  FCR terendah yaitu sebesar 1,57±0,02 artinya pakan yang  diberikan  termanfaatkan  dengan  baik dibandingkan  perlakuan  LED  yang  lain (Karakatsouli et al., 2008).
Performa pertumbuhan ikan yellow phantom meliputi  laju  pertumbuhan  harian, pertumbuhan  bobot,  pertumbuhan  panjang total,  jumlah  konsumsi  pakan,  dan  efisiensi pakan  pada  perlakuan  LED  merah  relatif memberikan  hasil  yang  terbaik  dan  berbeda nyata (P<0,05) dengan LED lainnya. Berdasarkan hasil tersebut diduga ikan yellow phantom menyukai  perairan  dengan  paparan cahaya merah
untuk menunjang pertumbuhannya.  Selain  ikan  rainbow  trout, ikan Perca fluviatilis mengalami pertumbuhan panjang  yang  tertinggi  pada  paparan  LED merah  dibandingkan  dengan  LED  putih  dan LED  biru  (Head  &  Malison,  2000). Penggunaan  LED  merah  untuk  juvenil  ikan mas memberikan hasil yang signifikan dengan tingkat  kelangsungan  hidup  mencapai  >80% dan pertumbuhan bobot mencapai 7,038±1,907 g dibandingkan LED biru, hijau, putih,  kuning,  dan  kondisi  gelap  (Nasir  & Farmer, 2017).
Kadar  glukosa  darah  tertinggi  yaitu  pada perlakuan  dengan  menggunakan  LED  biru. Hasil  uji  kadar  glukosa  pada  setiap  perlkuan berbeda  nyata  (P<0,05)  dengan  jumlah  kadar glukosa  tertinggi  pada  perlakuan  LED  biru. Menurut  Ajani et  al., (2011)  stres  pada  ikan sangat berkaitan erat dengan energi pada tubuh ikan.  Ikan  akan  mengeluarkan  energi  lebih untuk  beradaptasi  dengan  lingkungan.  Saat ikan  mencoba  untuk  beradaptasi  dengan lingkungan maka energi akan digunakan untuk mempertahankan hidup dari pada pertumbuhan. Semakin tingginya energi yang dibutuhkan untuk beradaptasi maka merangsang  mobilisasi  dan  meningkatnya kadar  glukosa  dalam  darah  (Utami et  al. , 2018).
Mekanisme  terjadi  peningkatan  glukosa dalam  darah  ikan  yaitu  dimulai  saat  organ reseptor  mendapatkan  rangsangan  dari  luar yang  dianggap  faktor  stres  oleh  ikan. Kemudian  informasi  tersebut  melalui  sistem syaraf  diteruskan  ke  otak  yaitu  pada  bagian hipotalamus.
Hipotalamus kemudian
memberikan  sinyal  ke  sel  kromatofin  untuk mensekresikan hormon
katekolamin.
Kemudian  adanya  hormon  katekolamin  akan merangsang  aktifnya  enzim-enzim  yang terlibat  dalam  proses  katabolsime  simpanan glikogen. Hal tersebut menjadi penyebab kadar glukosa  darah  ikan  meningkat  yang  menjadi salah  satu  indikator  ikan  stres  (Cho et  al., 2015).
Keragaan  warna  visual  ikan yellow phantom pada setiap perlakuan memiliki hasil yang  beragam.  Keragaan  warna  visual  ikan yellow  phantom diamati  pada  bagian  sirip kaudal dan black spot pada sisi kanan dan kiri di  bagian  belakang  insang.  Sirip  kaudal  yang menunjukan kualitas warna terbaik yaitu sirip kaudal yang berwarna kuning. Sedangkan hasil yang  didapatkan  pada  perlakuan  paparan spektrum LED berbeda, LED putih menunjukan  hasil  terbaik  yaitu  dengan keragaan  warna  hitam  sebesar  33,11±0,86%. Selain  LED  putih  menunjukan  hasil  terbaik untuk black  spot dengan  warna  hitam  yang pekat,  spektrum  lampu  LED  putih  pun menunjukkan  hasil  terbaik  pada  warna  sirip kaudal. Perlakuan spektrum lampu LED putih menunjukan  warna  kuning  terbaik  pada  sirip kaudal  sebesar  37,91±0,76%.  Hasil  pada perlakuan  spektrum  lampu  LED  putih  untuk warna hitam pada black spot dan warna kuning pada  sirip  kaudal  menunjukan  hasil  yang berbeda nyata (P<0,05).
Menurut  Audina et  al. (2017),  warna  dan tingkat  kecerahan  perairan  memengaruhi kecerahan sisik  pada ikan. Tingkat  kecerahan yang  tinggi  secara  otomatis  menunjukan penetrasi  cahaya  yang  terjadi  secara  optimal sehingga  akan  dengan  mudah  meningkatkan kecerahan  sisik  ikan.  Kecerahan  perairan untuk  spesies  ikan  berbeda-beda.  Terdapat spesies  yang  memanfaatkan  cahaya  dalam intensitas  tinggi  dan  terdapat  spesies  yang
memanfaatkan  cahaya  dengan  intensitas rendah (Uthayasiva et al., 2014).
Kondisi lingkungan yang terang menyebabkan melanofor yang menyebar pada permukaan epidermis  kulit  dan menghasilkan warna  ikan  yang  cemerlang.  Pergerakan butiran sel pigmen yang terjadi mengakibatkan terjadinya  penyerapan  cahaya  yang  optimal oleh  sel  tersebut  sehingga  kualitas  warna meningkat.  Sedangkan  apabila  butiran  sel pigmen  berkumpul  di  dekat  nukleus  dapat menyebabkan  penurunan  kualitas  warna  ikan (Masfah et  al., 2018).  Perubahan  warna  pada ikan  dapat  terjadi  akibat  adanya  pergerakan dari sel pigmen. Pergerakan sel pigmen dapat disebabkan  oleh  rangsangan  dari  lingkunan seperti suhu, cahaya, dan lainnya (Subamia et al., 2013).
Perubahan  sel  pigmen  dapat  disebabkan kontrol  yang  dilakukan  oleh  hormon  pituitari dan  adrenalin  yang  disekresikan  dari  otak (Rahmawati et  al., 2016).  Ikan  dengan perlakuan  spektrum  ampu  LED  putih  kondisi wadah pemeliharaannya lebih terang dibandingkan dengan perlakuan lain. Sehingga ikan yang dipelihara pada cahaya yang terang dengan  gelap  akan  berbeda  pada  reaksi melanosomnya  yang  mengandung  pigmen melanofor  terhadap  rangsangan  cahaya  yang ada (Rahmawati et al., 2016). Spektrum lampu LED putih diduga sesuai untuk meningkatkan kualitas  warna  ikan yellow  phantom ,  sebab reaksi dari pigmen melanofor akan menghasilkan  warna  dengan  kualitas  yang baik  apabila  kondisi  cahaya  sesuai.  Warna yang  memucat  mengindikasikan  ikan yellow phantom mengalami  stres  hal  tersebut  karena tidak sesuainya kondisi cahaya yang diberikan dengan  kondisi  yang  optimal  untuk  ikan (Rahmawati et al., 2016). Penelitian pada ikan badut  oleh  Novita et  al. (2019)  menjelaskan bahwa  warna  yang  dihasilkan  oleh  paparan spektrum lampu LED hanya bersifat sementara.
Kualitas air media pemelihaan ikan yellow phantom selama penelitian meliputi suhu, pH, oksigen  terlarut,  nitrit,  dan Total  Amonia Nitrogen (TAN). Suhu air selama pemeliharaan  ikan yellow  phantom dalam
kondisi  optimal  hal  tersebut  ditunjukkan dengan  tingkat  kelangsungan  hidup  ikan terendah 90%. Suhu media pemeliharaan ikan yellow phantom berkisar antara 28,0-30,2 °C. pH media pemeliharaan  ikan yellow phantom dalam  kondisi  optimal  yaitu  berkisar  antara 6,8-7,2. Oksigen terlarut selama pemeliharaan berkisar  antara  4,4-6,0  mg  L-1.  Kadar  nitrit pada media pemeliharaan ikan yellow phantom berkisar antara 0,006-,178 mg L-1. Nilai Total Amonia Nitrogen (TAN) selama pemeliharaan berkisar  antara  0,004-0,0078  mg  L-1.  Suhu optimal  pemeliharaan  ikan yellow  phantom berkisar  23-27  °C.  pH  untuk  pemeliharaan ikan yellow  phantom berkisar  antara  6,0-6,5 (Axelrod et al., 2004).

## KESIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian ini dihasilkan kesimpulan bahwa perbedaan paparan spektrum  lampu  LED  mampu  meingkatkan kinerja  perumbuhan  dan  kualitas  warna    ikan yellow  phantom .  Kualitas  warna  terbaik  pada LED  putih  dengan  keragaan  warna  hitam 33,11±0,86%  dan  keragaan  warna  kuning 37,91±0,76%.
Selain  itu,  saran  yang  dapat  di  diberikan sebagai bahan pengembangan adalah perlunya dilakukan  penelitian  lanjutan  berupa  lama pemberian  perlakuan  dengan  kombinasi spektrum  lampu  LED  merah  dan  putih  untuk meningkatkan  pertumbuhan  serta  kualitas warna ikan yellow phantom .

## DAFTAR PUSTAKA
Adha  A.  2016.  Efektivitas  paparan  spektrum cahaya  led  terhadap  pertumbuhan  dan kualitas  warna  ikan  rainbow  bosemani Melanotaenia boesemani [Skripsi]. Institut Pertanian Bogor: Bogor.
Ajani EK, Setufe SB, and Oyebola OO. 2011.
Effects of stocking density on haematological  functions  of  juvenile African  catfish  ( Clarias  gariepinus )  fed varying  crude  protein  levels. African Journal of Food Science 9(2): 65 – 69.
Aras  AK,  Nirmala  K,  Soelistyowati  DT,  dan Sudarto.  2015.  Manipulasi  spektrum cahaya  led  terhadap  pertumbuhan  dan
kualitas  warna  ikan  Botia Chromobotia macracanthus (Bleeker,  1852). Jurnal Ikhtilogi Indonesia 16(1):45-55.
Audina M, Yanti AH, dan Setyawati TR. 2017.
Tingkat  kecerahan  sisik  bagian  pangkal caput,  dorsal,  dan  pangkal  caudal  ikan Barbodes  lateristriga yang  ditemukan  di sungai  mentuka  Kabupaten  Sekadau.
Protobiont 6(3): 98-101.
Axelrod  HR,  Axelrod  GS,  Burgess  WE,
Pronek N, Scott BM, and Walls JG. 2004. Atlas of freshwater aquarium fishes. Ed ke- 10. T.F.H: Washington.
Bouef G and Le Bail PY. 1999. Does light have an influence on fish growth?. Aquaculture 177:129-152.
Cho HC, Kim JE, Kim BH, and Baek HJ. 2015.
Effects of water temperature change on the hematological  responses  and  plasma cortisol  levels  in  growing  of  red  spotted grouper, Epinephelus  akaara.  Journal  of
The  Korea  Society  of  Developmental Biology 19(1): 19-24.
Effendie MI. 1979. Metode Biologi Perikanan .
Yayasan Dewi Sri: Bogor.
Giri  SS,  Sao  SK,  Sahu  BB,  Monthy  SN,
Mukhopadhayay  PK,  and  Ayyappan  S. 2002.  Larval  survival  and  growth  in Wallango attu (Bloch & Schneider; effects of light, phptoperiod and feeding regimes.
Aquaculture 213: 151-161.
Goddard  S.  1996. Feed  Management  in Intensive Aquaculture . Cahpman and Hall: New York.
Head  AB  and  Malison  JA.  2000.  Effetcs  of lighting spectrum and disturbance level on the growth and stress responses of yellow perch  Perca  flavences. Journal  World Aquaculture Society 31: 73-80. Huisman  EA.  1987. Principles  of  Fish Production . Agricultural University press: Wageningen.
Karakatsouli N, Papoutsoglou SE, Panopoulos G,    Papoutsoglou  ES,  Hadio  S,  and Kalogiannis  D.  2008.  Effects  of  light spectrum on growth and stress response of rainbow  trot Oncorhyncus  mykiss reared under  recirculating  system  conditions. Aquaculture Engineering 38: 36-42.
Masfah R, Setyawati TR, dan Yanti AH. 2018.
Tingkat kecerahan sisik ikan arwana merah ( Scleropages  formosus ). Protobiont 7(2):
43-46.
Medkour B, Mehanna M, and Abdelmonem M. 2013.  Comparison  study  between  using HS,  LED,  and  C.F  lamp  in  roadway lighting. New York Science Journal 6(10):
26-30.
Nasir  NA  and  Farmer  KW.  2017.  Effects  of differents  artificial  light  colors  on  the growth of juvenils common carp ( Cyprinus caropio ). Esopo.  Environ.  Journal 3(3): 79-86.
Novita RD, Nirmala K, Supriyono E, dan Ardi I.  2019.  Efektivitas  paparan  spektrum cahaya lampu Light Emitting Diode (LED) terhadap pertumbuhan  dan kualitas  warna yuwana  ikan  badut, Amphiprion  percula
(Lacepede, 1802). Jurnal Ikhtiologi Indonesia 19(1): 127-141. Nurdin M. 2014. Perbedaan Lama Penyinaran dan Intensitas Cahaya Terhadap Pertumbuhan  Serta  Sintasan  Juvenil  Ikan Tengadak  Barbonymus  schwanenfeldii [Tesis]. Institut Pertanian Bogor: Bogor.
Rahmawati  R,  Cindelaras  S,  dan  Kusrini  E.
2016.  Keragaan  pertumbuhan  dan  warna ikan wild  betta Betta sp. dengan rekayasa intensitas  cahaya  dan  warna  latar. Jurnal Riset Akuakultur 11(2): 155-162.
Satyani D dan Subamia IW. 2009. Ikan hias air tawar ekspor indonesia. Media Akuakultur 4(1): 1-17.
Subamia  IW,  Meilisza  N,  dan  Permana  A. 2013.  Peningkatan  kualitas  warna  kuning dan  merah  serta  pertumbuhan  benih  ikan koi  melalui  pengayaan  tepung  kepala udang dalam pakan. Jurnal Riset Akuakultur 8(3): 429-438.
Takeuchi, T. 1988. Laboratory work-chemical evaluation  of  dietary  nutrients .  In: Watanabe,  T.  (ed.) Fish  Nutrition  and Mariculture . JICA Kanagawa International Fisheries Training Centre: Tokyo.
Uthayasiva M, Haq MA, and Kumar TT. 2014. Significance  of  light  intensity  to  enhance the  colour  of  marine  ornamental  fish Amphiprion  clarkii (Bannet,  1830)  in
captivity. International  Journal  of  Fauna and Biological Studies 1(4): 14-18.
Volpato GL, Bovi TS, Freitas RHA, Silva DF,
Delicio HC, Giaquint PC, and Barreto RE.
2013.  Red  light  stimulates  feeding motivation  in  fish  but  does  not  improve growth rate. PLOS ONE 8(3).