## Induksi umbi mikro dengan paclobutrazol untuk meningkatkan produksi ubi jalar (Ipomoea batatas L.)
Induction of microtubers with paclobutrazol to increase sweet potato production (Ipomoea batatas L.)
Lilis Udkhulul Jannah 1* , Eko Setiawan 1
1 Program Studi Agroekoteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Trunojoyo Madura Jl. Raya Telang PO BOX 2 Kamal, Bangkalan, Jawa Timur, Indonesia
* Email korespondensi: lilisujhe707@gmail.com
Diterima: 03 Desember 2021 / Disetujui: 28 Juni 2022

## ABSTRACT
Paclobutrazol  as a  plant growth  regulator  for  decrease  tissue metabolism and inhibited vegetative growth. This study aimed  to  obtain  propagules  and  micro  tubers  that  would  be  used  as  sweet  potato  seeds.  The  study  was  carried  out  at  the Biotechnology Laboratory, Faculty of Agriculture, University of Trunojoyo Madura, from November 2020 to May 2021. This study used a Factorial Completely Randomized Design with two factors, namely the concentration of paclobutrazol (0 ppm, 1 ppm,  5  ppm,  10  ppm)  and  the  concentration  of  sucrose  (30  g  L -1 ,  60  g  L -1 ,  90  g  L -1 ,  120  g  L -1 ),  and  was  analyzed  by  using Duncan's multiple range test (DMRT) at 5% level. The research showed that there was an effect of giving paclobutrazole and sucrose on the parameters of planlet height, number of leaves, root length and number of shoots. However, until the plantlets were 8 MSP (weeks after treatment) at various concentrations of paclobutrazol and sucrose, the micro tubers were not formed.
Keywords: micro tubers, paclobutrazol, sucrose, sweet potato.

## ABSTRAK
Paclobutrazol  merupakan  retardant  yang  memiliki  sifat  menurunkan  metabolismee  jaringan  dan  menghambat pertumbuhan vegetatif. Tujuan penelitian untuk mendapatkan umbi mikro yang akan dijadikan sebagai bibit ubi jalar. Penelitian telah  dilaksanakan  di  Laboratorium  Bioteknologi  Fakultas  Pertanian  Universitas  Trunojoyo  Madura,  dari  bulan  November 2020  sampai  Mei  2021.  Penelitian  ini  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap  non-faktorial  dengan  variabel  bebas  yang diberikan berupa konsentrasi paclobutrazol (0 ppm, 1 ppm, 5 ppm dan 10 ppm) serta konsentrasi sukrosa (30 g L -1 , 60 g L -1 , 90 g L -1 , 120 g L -1) , dan dianalisis menggunakan uji jarak berganda Duncan pada taraf 5%. Hasil penelitian menunjukan adanya pengaruh pemberian  paclobutrazol  dan sukrosa pada parameter tinggi planlet, jumlah helai daun, panjang  akar dan jumlah tunas. Namun, hingga planlet umur 8 MSP (minggu setelah perlakuan) pada berbagai konsentrasi paclobutrazol dan sukrosa umbi mikro belum mampu terbentuk.
Kata kunci: paclobutrazol, sukrosa, ubi jalar, umbi mikro.

## PENDAHULUAN
Ubi  jalar atau dalam bahasa latin Ipomoea batatas L. merupakan tanaman dikotil yang berperan sebagai salah satu sumber  karbohidrat  utama  yang  memiliki  potensi  untuk dikembangkan dalam mendukung program ketahanan pangan yang digencarkan oleh pemerintah yaitu diversifikasi pangan (Litbang Pertanian  2011).  Berdasarkan data yang diperoleh dari  Pusat  Data  dan  Sistem  Informasi  Pertanian    (2013) sampai  saat  ini  jumlah konsumsi umbi-umbian di  Indonesia mencapai  40  g/kapita/hari  atau  6%  dari  jumlah  konsumsi ideal yang ditetapkan pada PPH (Pola Pangan Harapan) yaitu sebesar 100 g/kapita/hari. Seiring dengan masih mendominasinya  komoditas  padi-padian,  maka  konsumsi umbi-umbian  perlu  ditingkatkan  sehingga  skor  PPH  yang pada tahun 2012 hanya 89,8 dapat  memenuhi target  sebesar 93,3 di tahun 2014 dan sebesar 100 di tahun 2020.
Ubi  jalar  umumnya  digunakan  sebagai  makanan pengganti atau subtitusi dalam rangka menetralisir terjadinya kekurangan pangan. Namun, penduduk di Maluku dan Papua memanfaatkan  ubi  jalar  sebagai  bahan  konsumsi  pokok. Unsur-unsur  baik  yang  terkandung  dalam  ubi  jalar  meliputi karbohidrat  sebanyak  27,9  g,  k  alori  yang  terkandung sebanyak  113  kal,  kemudian  protein  di  dalamnya  2,2  mg, kandungan lemak 0,7 g, vitamin A sebesar 7100 IU, vitamin B1 0,08 mg, vitamin B2 0,05 mg serta kandungan serat kasar sebesar 0,30 g (Setyaningsih et al ., 2018) . Selain umbi bagian lain  dari  ubi  jalar  yang  dapat  dimanfaatkan  yaitu  daun. Setiawan (2017) menyampaikan dalam bukunya, masyarakat Pulau  Madura  memanfaatkan  daun  ubi  jalar  untuk  sayuran yang  dikonsumsi  sehari-hari  dan  terkadang  diperjualbelikan di pasar tradisional.
Seiring dengan berkembangnya ilmu pengetahuan dan teknologi pada bidang pertanian, berbagai macam cara dapat
DOI: https://doi.org/10.21107/agrovigor.v15i2.12766 Agrovigor : Jurnal Agroekoteknologi http://journal.trunojoyo.ac.id/agrovigor Copyright (c) 2022 Author (s) ISSN: 1979-5777 ( Print ), 2477-0353 ( Online )
dilakukan dalam perbanyakan tanaman. Kultur jaringan atau sering  disebut  juga  teknik in  vitro merupakan  salah  satu teknik  perbanyakan  tanaman  untuk  mendapatkan  bahan tanam yang bebas patogen. Perbanyakan kultur jaringan dapat melalui  stek  mikro  atau  umbi  mikro,  dimana  bibit  yang berasal dari umbi mikro ketika di tanam akan menghasilkan umbi  lebih  banyak  apabila  dibandingkan  dengan  bibit  umbi pada  umumnya  (Sari et  al .,  2014).  Retardan  atau  inhibitor merupakan zat pengatur tumbuh pada tanaman yang bersifat menghambat  pertumbuhan  tanaman.  Pemberian  retardan dapat  digunakan  untuk  memodifikasi  pertumbuhan  secara fisiologis, yaitu dengan mengatur pertumbuhan vegetatif dan generatifnya. Paclobutrazol merupakan zat pengatur tumbuh jenis  retardant,  dimana  dengan  penambahan  paclobutrazol pada media tumbuh akan menyebabkan penghambatan pada laju  pertumbuhan.  Sama  seperti  apa  yang  disampaikan Susilawati  &  Sulistiana  (2018)  pada  penelitianya,  bahwa pemberian  retardant  pada  media,  mampu  menghambat  laju pertumbuhan  bibit  pisang  Ampyang  tanpa  merusak  proses fisiologis  dan  metabolismenya,  sehingga  periode  subkultur dapat dikurangi.
Penambahan  sukrosa  pada  media  kultur  dilakukan sebab  sukrosa  berperan  sebagai  sumber  karbohidrat  yang berguna  pada  respirasi  tanaman,  dimana  hal  tersebut dilakukan karena planlet yang berada dalam botol tidak dapat melakukan  proses  fotosintesis.  Kemudian  pembelahan  sel pada  tanaman  kultur  dilakukan  dengan  bantuan  energy  dari hasil  respirasi  (Dwiyani,  2015).  Selain  pemberian  zat pengatur  tumbuh  jenis  retardan,  untuk  menginduksi  umbi mikro  dapat  juga  dilakukan  dengan  penambahan  sukrosa konsentrasi  tinggi.  Seperti  yang  dikatakan  oleh  Masniawati (2016)  dalam  prosiding  seminar  nasionalnya,  bahwa pemberian  sukrosa  dan  paclobutrazol  dengan  konsentrasi tertentu akan menginduksi umbi mikro pada kentang varietas atlantik.  Dalam  penelitian  tersebut  diperoleh  konsentrasi pemberian paclobutrazol 150 g L -1 dan konsentrasi sukrosa 5 ppm yang efektif dalam menginduksi umbi mikro. Selain itu diperoleh juga konsentrasi optimum pada pemberian sukrosa yaitu 150 g L -1 .
Dengan  adanya  penambahan  paclobutrazol  sebagai inhibitor  dan  peningkatan  konsentrasi  sukrosa  pada  media, diharapkan pertumbuhan tunas ubi jalar secara in vitro lebih mengarah ke pertumbuhan generative sehingga berpengaruh terhadap  pembentukan  umbi  mikro.  Penelitian  ini  bertujuan untuk  mengetahui  pengaruh  penambahan  paclobutrazol  dan peningkatan  konsentrasi  sukrosa  pada  media  MS  terhadap pertumbuhan tunas serta pembentukan umbi mikro ubi jalar.

## BAHAN DAN METODE
Bahan  yang  digunakan  adalah  eksplan  yang  berasal dari tunas pucuk hasil dari penunasan umbi ubi jalar, media Murashige  dan  Skoog  (MS),  alkohol  70%,  agar-agar, aquades, paclobutrazol, Clorox (bayclin), KOH 1 N, HCl 1 N. Penelitian  ini  menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap  non factorial  dengan  variabel  bebas  yang  diberikan  berupa
konsentrasi paclobutrazol 0,1,5 dan 10 ppm serta konsentrasi sukrosa 30, 60, 90 dan 120 g L -1 .  Masing-masing perlakuan diulang sebanyak tiga kali.
Penelitian  ini  dilakukan  melalui  2  tahap  yaitu  fase menumbuhkan  tunas  dan  fase  menumbuhkan  umbi,  dengan pelaksanaan  sebagai  berikut:  fase  menumbuhkan  tunas,  1) Sterilisasi  alat  yang  akan  digunakan  dalam  kegiatan  kultur jaringan  (botol  kultur, dissecting  kit , glass  ware )  dengan menggunakan autoclave pada suhu  121 °C  selama 20 menit pada  tekanan  2  atm.  2)  Pembuatan  media  padat,  pertama dibuat  larutan  stok  yang  dibedakan  berdasarkan  unsur  hara, vitamin,  dan  zat  pengatur  tumbuh.  Media  MS  padat  dibuat dengan  ketentuan  derajat  pH  antara  5,7-5,8  dan  konsentrasi sukrosa yang diberikan 30 g L -1 . Media dituang sebanyak 25 mL/botol  kultur  kemudian  ditutup  rapat  dan  disterilisasi menggunakan  autoclave  dengan  suhu  sama  seperti  awal.  3) Sterilisasi eksplan, eksplan tunas pucuk disterilkan di dalam LAF dengan 3 perlakuan meliputi larutan iodine 3% selama 15  menit,  larutan  bayclin  10%  selama  10  menit  dan  larutan bayclin  5%  selama  5  menit.  Setiap  selesai  perlakuan kemudian  eksplan  dibilas  dalam  aquades  steril  sebanyak  3 kali  dengan  masing-masing  waktu  pembilasan  5  menit.  4) Penanaman  eksplan,  tunas  pucuk  setelah  disterilkan diinokulasi pada media padat dengan ketentuan satu eksplan per botol. Botol kultur berisi eksplan dileakkan dalam ruang inkubasi  selama  8  minggu  dan  disemprot  menggunakan alkohol 70% minimal 3 hari sekali.
Fase  menumbuhkan  umbi,  1)  Pembuatan  media  cair, media  cair  yang  digunakan  terdiri  atas  media  MS  (tanpa sitokinin,  auksin,  pemadat)  yang  ditambahkan  sukrosa  dan paclobutrazol dengan konsentrasi sesuai perlakuan. Kemudian  media  disterilkan  menggunakan  autoclave  pada suhu  121  °C  dengan  tekanan  2  atm  selama  20  menit.  2) Penambahan  media  MS  cair  untuk  pengumbian  dilakukan setelah planlet berumur 8 minggu, sebanyak 25 mL tiap botol dan  dilakukan  di  dalam Laminar  Air  Flow .  3)  Botol  kultur disimpan  pada  ruang  inkubasi  degan  suhu  21-22  °C  dalam kondisi gelap selama 8 minggu dan disemprot menggunakan alkohol 70% minimal 3 hari sekali.
M1   = 0 ppm + 30 g L -1 M2   = 0 ppm + 60 g L -1 M3   = 0 ppm + 90 g L -1
M4   = 0 ppm + 120 g L -1
M5   = 1 ppm + 30 g L -1
M6   = 1 ppm + 60 g L -1
M7   = 1 ppm + 90 g L -1 M8   = 1 ppm + 120 g L -1 M9   = 5 ppm + 30 g L -1 M10 = 5 ppm + 60 g L -1
M11 = 5 ppm + 90 g L -1
M12 = 5 ppm + 120 g L -1
M13 = 10 ppm + 30 g L -1
M14 = 10 ppm + 60 g L -1
M15 = 10 ppm + 90 g L -1 M16 = 10 ppm + 120 g L -1
Data yang diperoleh dari hasil  pengamatan dianalisis secara  statistik  dengan  Analisis  Variansi  (ANOVA)  pada
taraf 5%. Apabila terdapat perlakuan yang berpengaruh nyata akan  dilakukan  uji  lanjut  menggunakan  uji  jarak  berganda Duncan pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Hasil

## Umbi Mikro
Berdasarkan hasil penelitian, hingga akhir pengamatan yaitu pada planlet ubi jalar dengan umur 8 MSP (minggu  setelah  perlakuan  media  MS  cair)  belum menunjukkan  adanya  umbi  mikro  yang  terbentuk.  Hal tersebut  terjadi  akibat  terdapat  beberapa  faktor  yang mempengaruhi  terbentuknya  umbi  mikro  pada  proses perbanyakan  secara in  vitro .  Namun  demikian  penambahan paclobutrazol dan sukrosa dengan berbagai konsentrasi pada media MS cair menunjukan efek pada tinggi planlet, jumlah daun, jumlah tunas dan panjang akar.

## Tinggi Planlet
Pertumbuhan  tinggi  planlet  akibat  penambahan berbagai konsentrasi paclobutrazol dan sukrosa menunjukan
adanya  perbedaan  yang  signifikan  berdasarkan  uji  statistik (data tidak ditampilkan). Hal ini menunjukan bahwa terdapat pengaruh  perlakuan  penambahan  berbagai  konsentrasi paclobutrazol dan sukrosa pada parameter tinggi planlet umur 8  MSP.  Berdasarkan  hasil  pengamatan  dapat  dilihat  pada gambar  1,  dimana  perlakuan  yang  menunjukan  grafik  rata- rata  tinggi  planlet  tertinggi  yaitu  M11  dengan  penambahan paclobutrazol 5 ppm/L dengan sukrosa 90 g L -1 pada media MS  cair.  Tinggi  planlet  optimal  pada  perlakuan  M11  yang dibuktikan pada perlakuan M12 yaitu sukrosa 120 g L -1 tinggi planlet menunjukan grafik menurun.

## Jumlah Helai Daun
Berdasarkan hasil uji statistik (data tidak ditampilkan) perlakuan  paclobutrazol  dan  konsentrasi  sukrosa  terhadap parameter jumlah helai daun menunjukan adanya perbedaan yang  signifikan  pada  planlet  umur  1-5  MSP  dan  7-8  MSP, namun tidak terdapat perbedaan yang signifikan pada umur 6 MSP.  Hal  ini  menunjukan  bahwa  terdapat  pengaruh  akibat penambahan berbagai konsentrasi paclobutrazol dan sukrosa pada  planlet  umur  1-5  dan  7-8  minggu  setelah  penambahan media cair, namun tidak menunjukan adanya pengaruh pada planlet umur 6 minggu setelah penambahan media cair.
Gambar 1. A) Planlet umur 8 MSP; B) Planlet umur 8 MSP (dikeluarkan dari botol)
Gambar 2. Rata-rata tinggi planlet I. batatas pada 8 MSP. 0,00 2,00 4,00 6,00 8,00 M1 M2 M3 M4 M5 M6 M7 M8 M9 M10 M11 M12 M13 M14 M15 M16 T in ggi ( cm ) Perlakuan A B
Gambar 3. Rata-rata jumlah helai daun pada planlet berumur 8 MSP.
Gambar 4. Rata-rata panjang akar pada planlet umur 8 MSP.
Gambar 5. Rata-rata jumlah tunas pada planlet berumur 1 hingga 8 minggu MSP.
Apabila dilihat dengan grafik, perlakuan paclobutrazol 1  ppm/L  dan  sukrosa  120  g  L -1 (M8)  menunjukan  grafik tertinggi  selama  rentan  waktu  umur  planlet  1-8  MSP. Sedangkan  perlakuan  M2  yaitu  tanpa  penambahan paclobutrazol dan konsentrasi sukrosa 30 g L -1 menunjukan grafik  rata-rata  jumlah  helai  daun  pada  planlet  terendah.
Jumlah  helai  daun  optimum  pada  perlakuan  1  ppm paclobutrazol  dan  120  g  L -1 sukrosa  pada  media,  kemudian pada  media  dengan  penambahan  konsentrasi  paclobutrazol lebih  tinggi  menunjukan  graik  yang  menurun  baik  pada sukrosa konsentrasi rendah maupun tinggi sekalipun.
0,00 0,50 1,00 1,50 2,00 2,50 3,00 3,50 4,00 4,50 M1 M2 M3 M4 M5 M6 M7 M8 M9 M10 M11 M12 M13 M14 M15 M16 R at a- ra ta j um la h h el ai da un Perlakuan 0,00 5,00 10,00 15,00 20,00 25,00 30,00 M1 M2 M3 M4 M5 M6 M7 M8 M9 M10 M11 M12 M13 M14 M15 M16 R er at a pa n ja n g aka r (c m ) Perlakuan 0,0 0,5 1,0 1,5 2,0 2,5 M1 M2 M3 M4 M5 M6 M7 M8 M9 M10 M11 M12 M13 M14 M15 M16 R er at a jum la h t un as

## Panjang Akar
Berdasarkan hasil uji statistik (data tidak ditampilkan) perlakuan  paclobutrazol  dan  sukrosa  menunjukan  adanya perbedaan yang signifikan pada parameter panjang akar. Hal tersebut dapat dilihat pada grafik di atas, perlakuan media MS cair  dengan  penambahan  paclobutrazol  5  ppm/L  dan konsentrasi  sukrosa  30  g  L -1 (M10)  menunjukan  grafik tertinggi  dibandingkan  dengan  perlakuan  lainnya  yang disusul  dengan  perlakuan  M13  media  dengan  komposisi paclobutrazol  sebanyak  10  ppm  dan  sukrosa  30  g  L -1 . Sedangkan  grafik  terendah  ditunjukan  pada  perlakuan  M2 yaitu komposisi media MS yang digunakan 60 g L -1 sukrosa dengan tanpa penambahan paclobutrazol.

## Jumlah tunas
Perlakuan  paclobutrazol  10  ppm/L  dan  konsentrasi sukrosa 30 g L -1 (M13) serta 10 ppm/L paclobutrazol dan 90 g  L -1 sukrosa (M15)  menunjukan  jumlah  tunas  pada  planlet dengan grafik tertinggi selama rentan waktu umur planlet 1-8 MSP.  Sedangkan  perlakuan  M2  yaitu  tanpa  penambahan paclobutrazol pada  media MS dan konsentrasi  sukrosa 30  g L -1 menunjukan  grafik  rata-rata  jumlah  helai  daun  pada planlet terendah. Begitupun pada perlakuan M3,M9, dan M12 juga  menunjukan  grafik  terendah.  Jumlah  tunas  baru  yang muncul  optimum  pada  perlakuan  M13  dan  M15,  kemudian pada  media  dengan  penambahan  konsentrasi  paclobutrazol serta sukrosa lebih tinggi menunjukan graik yang menurun.

## Pembahasan
Bentuk  miniatur  dari  umbi  dengan  karakteristik genetik yang berbeda biasa disebut dengan umbi mikro. Umbi mikro adalah umbi kecil hasil dari teknik kultur jaringan yang dilakukan secara aseptic. Umbi mikro lebih mudah ditangani daripada  tanaman  hasil in  vitro ,  sebab  umbi  mikro  dapat disimpan  selama  beberapa  bulan  dan  kemudian  ditanam langsung di lapangan (Mamiya et al., 2020). Penggunaan zat pengatur tumbuh pada teknik kultur jaringan tergantung pada tujuan  pertumbuhan  jaringan  yang  diinginkan.  Untuk pembentukan  tunas  pada  umumnya  digunakan  sitokinin sedangkan  untuk  pembentukan  akar  dan  kalus  digunakan auksin  (Lestari,  2011).  Dalam  proses  pembentukan  umbi mikro dipengaruhi oleh adanya keseimbangan antara hormon pemacu  dan  penghambat  pada  suatu  tanaman.  Salah  satu hormon  eksogen  yang  digunakan  yaitu  sitokinin.  Sitokinin digunakan untuk merangsang terbentuknya tunas, berpengaruh dalam metabolisme sel, dan aktivitas utamanya yaitu mendorong pembelahan sel. Penambahan retardant atau zat penghambat tumbuh juga diperlukan untuk menghambat dan  menekan  aktivitas  giberelin.  Penghambatan  ini  dapat mempercepat dan  memfokuskan  energi dalam pembentukan ubi  (Ibrahim  et  al.,  2015).  Paclobutrazol  berperan  sebagai penghambat  giberelin,  berperan  menurunkan  pertumbuhan vegetatif sehingga dapat merangsang pertumbuhan bunga dan buah (Desta & Amare, 2021).
Penelitian  ini  dilakukan  penambahan  retardant paclobutrazol pada media MS cair dengan tujuan akan terjadi
penghambatan  pada  laju  pertumbuhan,  sehingga  tanaman masuk ke fase generatif lebih cepat yaitu pembentukan umbi mikro  ubi  jalar  ( Ipomoea  batatas) .  Berdasarkan  hasil penelitian hingga planlet berumur 8 minggu setelah perlakuan (penambahan media MS cair) parameter waktu muncul umbi mikro, jumlah umbi mikro per tanaman, diameter umbi mikro dan berat basah umbi  mikro masih belum terpenuhi, dimana pengaruh perlakuan belum mempengaruhi daya tumbuh umbi mikro. Hal tersebut diduga karena kondisi pencahayaan pada ruang  kultur  belum  sesuai.  Menurut  Mamiya  et  al.,  (2020) langkah produksi mikrotuber dilakukan dalam kondisi ruang kultur difiksasi selama 116 jam fotoperiode atau gelap terus menerus.  Dengan  cara  ini  dihasilkan  sekitar  250.000 mikrotuber  per tahun  pada  luas  rung  kultur  jaringan  66  m 2 . Namun  pada  penelitian  ini    fase  menumbuhkan  umbi  yang seharusnya dilakukan dalam kondisi gelap tidak sepenuhnya eksplan  berada  dalam  kondisi  gelap.  Sebab  jarak  antara  rak kultur  untuk  botol  berisi  planlet  hasil  inokulasi  dengan  rak untuk  penempatan  botol  setelah  perlakuan  berdekatan, sehingga  pada  fase  pengumbian  tetap  terkena  cahaya meskipun aliran lampu di atasnya sudah dimatikan.
Eksplan  yang  digunakan  pada  penelitian  ini  yaitu berasal dari tunas pucuk ubi jalar. Dimana sebelumnya telah dilakukan uji pendahuluan mengenai asal eksplan yang akan digunakan  yaitu  dari  tunas  pucuk  tanaman  ubi  jalar  yang sudah  dewasa  (sudah  masuk  fase  generative).  Setelah dilakukan  uji  pendahuluan  menggunakan  tunas  pucuk tersebut,  eksplan  yang  dihasilkan  justru  mengalami kontaminasi  setelah  dikulturkan  pada  media  tanam. Kemudian diambil inisiatif penggunaan eksplan tunas pucuk yang diambil dengan cara menunaskan bagian umbi ubi jalar. Eksplan  ditanam  ke  dalam  botol  kultur  dan  menghasilkan planlet  yang  tumbuh  sehat.  Namun  pada  saat  fase menumbuhkan  umbi  belum  menunjukan  adanya  umbi  yang muncul. Hal tersebut diduga karena eksplan yang digunakan masih  memiliki umur  muda atau juvenil, dimana untuk fase muncul  umbi  ubi  jalar  itu  sendiri  harus  melewati  fase vegetatif terlebih dahulu kemudian baru umbi akan terbentuk sebagai  bentuk  dari  penimbunan  hasil  fotosintesis  yang terjadi.
Faktor  lain  yang  menjadi  pendugaan  belum terbentuknya  umbi  mikro  yaitu  pada  komposisi  media  MS cair  yang  digunakan  dalam  induksi  umbi  mikro  ubi  jalar berbeda dengan umbi mikro kentang sebab marga antara ubi jalar  dan  kentang  sendiri  berbeda,  sehingga  potensi pembentukan  umbi  mikro  ubi  jalar  belum  tercapai.  Asumsi tersebut  didukung  oleh  pernyataaan  Kurnia  (2014)  dalam artikel  Dinas  Pertanian  Kabupaten  Buleleng,  dikatakan bahwa hormon memiliki dua fungsi berbeda (mendorong dan menghambat)  pada  konsentrasi  yang  berbeda.  Satu  hormon yang sama dengan konsentrasi yang sama, akan menunjukan pengaruh  yang berbeda pada bagian tanaman  yang berbeda. Selain  itu  faktor  belum  terbentuknya  umbi  mikro  pada penelitian  ini  diduga  akibat  tidak  diberikannya  sitokinin dalam media cair perlakuan. Seperti yang telah disampaikan di  atas,  sitokinin  berperan  dalam  pembentukan  umbi  mikro karena berperan dalam pembelahan sel. Werner et al., (2001) menyatakan  bahwa  sitokinin  ditemukan  dari  tahun  1950 dengan  kemampuanya  untuk  menginduksi  pembelahan  sel
tanaman.  Sitokinin  apabila  bersama  dengan  auksin  akan berperan  penting  dalam  morfogenesis  tanaman,  memiliki pengaruh besar pada pembentukan akar dan tunas.
Namun,  dalam  penelitian  ini  pengaruh  yang  nyata akibat penambahan paclobutrazol dan peningkatan konsentrasi  sukrosa  terlihat  pada  parameter  pengamatan tinggi  planlet,  jumlah  helai  daun,  panjang  akar  dan  jumlah tunas.  Komposisi  yang  terkandung  dalam  media  kultur jaringan diantaranya unsur hara esensisal (makro dan mikro), hormon atau zat pengatur tumbuh, asam amino, vitamin dan sumber karbon. Sumber karbon pada media akan diserap oleh tanaman  atau  planlet  untuk  melakukan  pertumbuhan,  sebab fungsi dari karbon  adalah sebagai sumber energi. Diketahui bahwa  kebutuhan  sukrosa  pada  media  kultur  memiliki konsentrasi tertentu, tidak terlalu rendah maupun tidak terlalu tinggi.  Sitorus et  al .,  (2011)  juga  mengemukakan  apabila pemberian  sukrosa  dengan  konsentrasi  tinggi  pada  media kultur  akan  mengakibatkan  eksplan  memperoleh  banyak sumber energi untuk membantu mempercepat pertumbuhan. Dimana  banyaknya  sumber  energi  yang  terkandung  dalam media kultur akan mempercepat proses pembelahan sel pada tanaman.
Berdasarkan  hasil  analisis  statistik,  penambahan paclobutrazol dan konsentrasi sukrosa memberikan pengaruh terhadap  jumlah  tunas  pada  planlet  umur  2-6  MSP.  Pada grafik  dapat  dilihat  perlakuan  paclobutrazol  10  ppm/L  dan sukrosa 90 g L -1 menunjukan hasil jumlah tunas tertinggi pada planlet  umur  2-6  MSP.  Selain  faktor  perlakuan  diduga terdapat faktor internal  berupa hormon dari planlet sehingga pertumbuhan  jumlah  tunas  terus  bertambah.  Lestari  (2011) menyatakan zat pengatur tumbuh tanaman  berperan penting dalam  mengontrol  proses  biologi  jaringan,  antara  lain mengatur kecepatan pertumbuhan jaringan dan mengintegrasikan bagian jaringan tersebut agar menghasilkan suatu  tanaman.  Proses  pembentukan  jaringan  seperti  tunas atau  akar  memiliki  hubungan  antara  zat  pengatur  tumbuh eksogen  yang  ditambahkan  ke  dalam  media  dengan  zat pengatur  tumbuh  endogen  yang  diproduksi  oleh  jaringan tanaman.

## KESIMPULAN
Penambahan  paclobutrazol  dan  sukrosa  dengan berbagai konsentrasi belum mampu menginduksi umbi mikro pada  planlet  ubi  jalar  sampai  minggu  ke  8  setelah penambahan  media  perlakuan.  Namun  penambahan  media MS  cair  yang  diberi  paclobutrazol  serta  ditingkatkan konsentrasi  sukrosanya  menunjukan  adanya  pengaruh  pada tinggi planlet, panjang akar,  jumlah helai daun serta jumlah tunas pada planlet I. batatas .

## SARAN
Dapat  digunakan  asal  eksplan  lain  yang  jaringannya tidak  bersifat  juvenil  serta  meningkatkan  konsentrasi paclobutrazol yang digunakan pada media pengumbian.
UCAPAN TERIMAKASIH
Penulis  mengucapkan  terimakasih  kepada  PT Indofood  Sukses  Makmur,  Tbk.  yang  telah  mendanai penelitian ini melalui program Indofood Riset Nugraha (IRN) 2020/2021.

## DAFTAR PUSTAKA
Desta,  B.,  &  Amare,  G.  (2021).  Paclobutrazol  as  a  plant growth regulator. Chemical and Biological Technologies in Agriculture , 8 (1), 1–15. Dwiyani, R. (2015). Kultur Jaringan Tanaman . Pelawa Sari. Denpasar.
Ibrahim,  M.,  Nuraini,  A.,  &  Widayat,  D.  (2015).  Pengaruh sitokinin dan paklobutrazol terhadap pertumbuhan dan hasil  benih  kentang  (  Solanum  tuberosum  L  .)  G  2 kultivar granola dengan sistem nutrient film technique. Jurnal Kultivasi , 14 (2), 36–41. Kurnia, M. (2014). Hormon Tumbuhan . Distan.Bulelengkab.Go.Id.
Lestari, E. G. (2011). Peranan Zat Pengatur Tumbuh dalam Perbanyakan Tanaman melalui Kultur Jaringan . 7 (1), 63–68.
Litbang  Pertanian.  (2011).  Proposal  Penelitian  Kajian Keterkaitan Produksi, Perdagangan dan Konsumsi Ubi Jalar untuk Meningkatkan 30% Partisipasi  Konsumsi Mendukung Program Penganekaragaman Pangan dan Gizi. In Litbang Pertanian . https://pse.litbang.pertanian.go.id/
Mamiya, K., Tanabe, K., & Onishi, N. (2020). Production of potato  ( Solanum tuberosum , L .) microtubers using plastic  culture  bags. Plant  Biotechnology , 37 ,  233– 238.
Masniawati,  A.  (2016).  Pengaruh  konsentrasi  gula  dan pacloburazol dalam menginduksi umbi mikro kentang Solanum  tuberosum  L  .  varietas  atlantik  secara  in vitro. Prosiding Seminar Nasional from Basic Science to Comprehensive Education , 87–91.
Pusat  Data  dan  Sistem  Informasi  Pertanian.  (2013).  Buletin Konsumsi  Pangan. Buletin  Konsumsi  Pangan , 4 (2). http://pusdatin.setjen.pertanian.go.id/
Sari, D. A., Slameto, & Restanto, D. P. (2014). Induksi tunas kentang (Solanum tuberosum L.) menggunakan BAP (Benzil  Amino  Purine). Berkala  Ilmiah  Pertanian , 1 (1), 1–4.
Setiawan, E. (2017). Studi Etnobotani Pemanfaatan Tanaman Sayuran  di  Kabupaten  Pamekasan. Jurnal  Rekayasa , 10 (1), 1–8.
Setyaningsih,  N.,  Prayogo,  Y.,  Suminarti,  N.  E., Kendalpayak,  J.  R.,  &  Teknologi,  P.  (2018).  Paket Teknologi Budidaya Ubi Jalar ( Ipomoea batatas L .) Varietas  Cilembu  THE. Jurnal  Produksi  Tanaman ,
6 (8), 1891–1899.
Sitorus, E.  N.,  Hastuti,  E.  D.,  &  Setiari,  N.  (2011). Induksi kalus binahong ( Basella rubra L .) secara in vitro pada media  Murashige  &  Skoog  dengan  konsentrasi sukrosa yang berbeda. BIOMA , 13 (1), 1–7. Susilawati,  &  Sulistiana,  S.  (2018).  Efektifitas  konsentrasi paclobutrazol pada pisang cv. ampyang secara in vitro. Jurnal Matematika, Saint, Dan Teknologi , 19 (1), 1–7.
Werner, T., Motyka, V., Strnad, M., & Schmulling, T. (2001). Regulation  of  plant  growth  by  cytokinin  ´  s. The
Proceedings  of  the  National  Academy  of  Science (PNAS) , 98 (18), 10487–10492.