http://journal.ipb.ac.id/index.php/jurnalikt
e-ISSN       : 2620-309X

## PENGARUH KONDISI pH TERHADAP RESPONS FISIOLOGIS DAUN LAMUN JENIS Cymodocea rotundata
THE EFFECT OF pH CONDITIONS ON PHYSIOLOGICAL RESPONSE OF SEAGRASS LEAVES Cymodocea rotundata
Yudho Andika 1* , Mujizat Kawaroe 2 , Hefni Effendi 3 , & Neviaty P. Zamani 2
1 Program Studi Ilmu Kelautan, Sekolah Pascasarjana, IPB Univeristy, Bogor, 16680, Indonesia
2 Departemen Ilmu dan Teknologi Kelautan, FPIK, IPB University, Bogor, 16680, Indonesia
3 Departemen Manajemen Sumberdaya Perairan, FPIK, IPB Univeristy, Bogor, 16680, Indonesia *E-mail: andikayudho43@gmail.com

## ABSTRACT
Increased carbon dioxide (CO 2 ) in the atmosphere causes ocean acidification. Acidification becomes a threat  to  seagrass.  Nowadays,  one  of  the  challenges  that  must  be  faced  is  to  predict  the  long-term impact  of  acidification  on  the  physiology  of  seagrass.  This  research  aims  to  analyze  seagrass Cymodocea rotundata leave physiology responses to  pH that consists of chlorophyll-a and b content, photosynthesis  rate,  and  growth  rate  of  seagrass  leaf.  This  research  was  conducted  on  September– December 2017 in Marine Habitat Laboratory, Department of Marine Science and Technology, Bogor Agricultural  University.  The  method  used  a  completed  randomized  design  with  five  repetitions.  pH treatment used in this research is low pH (7.55), medium pH (7.78), and control (8.20). The setting of pH value was done by adding CO3 2 -. Chlorophyll-a and b contents, photosynthesis rate, and growth rate  on  C.  rotundata  leaf  are  higher  on  control  pH  treatment  than  medium  pH  (7.78)  and  low  pH (7.55). ANOVA test shows that only chlorophyll-a is significantly different. The difference pH affects the chlorophyll content of a and b, photosynthesis rate, and leaf growth rate. The low pH of seawater has been shown to inhibit the physiological activity of C. rotundata leaves.
Keywords : chlorophyll, growth, photosynthesis, seagrass

## ABSTRAK
Meningkatnya  konsentrasi  karbondioksida  (CO 2 )  di  atmosfer  dapat  menyebabkan  asidifikasi  laut. Asidifikasi  menjadi  ancaman  bagi  lamun.  Salah  satu  tantangan  yang  harus  dihadapi  saat  ini  adalah memprediksi  dampak  jangka panjang  dari asidifikasi  laut terhadap fisiologi  lamun. Tujuan penelitian ini untuk  menganalisis respons fisiologis lamun C. rotundata yang  meliputi kandungan klorofil a dan b, laju fotosintesis dan laju pertumbuhan daun lamun. Penelitian dilaksanakan pada bulan September– Desember  2017  di  Laboratorium Marine  Habitat Departemen  Ilmu  dan  Teknologi  Kelautan,  Institut Pertanian  Bogor.  Metode  yang  digunakan  adalah  rancangan  percobaan  acak  lengkap  5  pengulangan. Perlakuan pH yang digunakan yaitu pada nilai pH rendah (7,55), menengah (7,78) dan kontrol (8,20). Pengaturan  nilai  pH  dengan  cara  menambahkan  unsur  CO 3 2- .  Kandungan  klorofil  a  dan  b,  Laju fotosintesis  dan  Laju  pertumbuhan  daun C.  rotundata perlakuan  pH  8,20  lebih  tinggi  dibandingkan dengan  perlakuan  pH  7,78  dan  pH  7,55.  Uji  ANOVA  menunjukkan  hanya  klorofil  a  yang  berbeda signifikan.  Perbedaan  pH  memengaruhi  kandungan  klorofil  a  dan  b,  laju  fotosintesis  dan  laju pertumbuhan  daun.  Rendahnya  pH  air  laut  terbukti  menghambat  aktivitas  fisiologis  daun  lamun C. rotundata.
Kata kunci : fotosintesis, klorofil, pertumbuhan, seagrass

## I. PENDAHULUAN
Sumber  utama  karbondioksida  (CO 2 ) di  atmosfer  berasal  dari  pembakaran  bahan bakar fosil seperti minyak, batu bara, dan gas
alam (IPCC, 2014). Sejak abad ke-20, tinggi- nya  penggunaan  bahan  bakar  fosil  meme- ngaruhi  laju  pertumbuhan  karbon-dioksida (CO 2 )  beberapa  kali  lipat  (Canadell et  al ., 2007).  IPCC  (2013)  menjelaskan  peningka-
tan konsentrasi karbondioksida (CO 2 ) terlihat sangat  signifikan,  bahkan  lebih  cepat  dari prediksi  sebelumnya.  Keadaan  ini  menye- babkan  terjadinya  asidifikasi  laut  (Fabry et al., 2009).  pH  air  laut  diperkirakan  akan turun  0,3  sampai  0,4  unit,  sesuai  dengan meningkatnya  karbondioksida  (CO 2 )  antara 300–400  %  (Waldbusser et  al .,  2011). Menurut  IPCC  (2014)  pembakaran  bahan bakar  fosil  terus  berlanjut  dalam  100  tahun kedepan, sehingga dapat menyebabkan penu- runan  pH  permukaan  laut  hingga  mencapai angka 7,5.
pH  air  laut  berkaitan  erat  dengan karbon  terlarut,  semakin  banyak  karbon- dioksida  (CO 2 )  dan  asam  karbonat  (H 2 CO 3 ), maka  pH  akan  semakin  rendah  (Effendi, 2003).  Zeebe  &  Wolf-Gladrow  (2001)  me- nyatakan  karbondioksida  (CO 2 )  berpar- tisipasi  dalam  reaksi  kesetimbangan  sebagai sistem  penyangga.  Sarmiento  &  Gruber (2006) menyatakan dalam  proses asidifikasi, karbondioksida  (CO 2 )  yang  ada  di  atmosfer masuk ke dalam laut dan bereaksi dengan air laut  (H 2 O)  kemudian  membentuk  asam karbonat  (H 2 CO 3 ).  Asam  karbonat  (H 2 CO 3 ) di  perairan  akan  melepas  ion  H + dan  mem- bentuk  bikarbonat  (HCO 3 - ).  Ion  bikarbonat (HCO 3 - )  akan  melepas  ion  H + dan  mem- bentuk karbonat (CO 3 2- ). Ion H + yang dilepas menyebabkan  pH  perairan  laut  menurun (Mackereth et  al., 1989;  Sarmiento  & Gruber, 2006).
Tantangan yang harus dihadapi adalah  mengurangi  dampak  dari  asidifikasi laut  dan  bagaimana  mempertahankan  fungsi dari  ekosistem  laut  (Widdicombe  &  Spicer, 2008).  Knutzen  (1981)  menyatakan  bahwa biota  laut  mampu  mentolerir  penurunan  pH 0,5  sampai  1,0  unit,  dalam  kondisi  pH  yang lebih  rendah  akan  menganggu  proses  foto- sintesis,  mengurangi  kalsifikasi  karang,  dan menghambat pertumbuhan organisme. Fabricius et  al. (2011)  mengungkapkan  hal yang  berbeda,  asidifikasi  berdampak  pada meningkatnya  aktivitas  fotosintesis,  produk- tivitas  dan  biomassa  lamun.  Ekosistem lamun  memegang  peranan  penting  untuk
aktivitas  perikanan  (Bastyan  &  Cambridge, 2008).  Disamping  itu,  lamun  juga  berperan dalam  siklus gas karbondioksida  yang  mam- pu menyerap gas karbondioksida di atmosfer (Gullstrom et  al. ,  2017).  Lamun  membutuh- kan  cukup  banyak  karbon  anorganik  untuk pertumbuhan  dan  kelangsungan  hidupnya (Fourqurean et  al., 2012). C.  rotundata me- rupakan  salah  satu  spesies  yang  banyak ditemukan di kawasan Indo-Pasifik (Short et al., 2007).
Beberapa  penelitian  sebelumnya  me- nunjukkan bahwa asidifikasi laut meningkat- kan  aktivitas  fotosintesis  pada  spesies C. serrulata,  Halodule  uninervis , Thalasia hemprichii (Ow et  al., 2015)  dan Zoostera polichlamys (Borum et al., 2016). Asidifikasi laut menghambat aktivitas fotosintesis lamun Zoostera  marina (Zimmerman et  al., 2017). Asidifikasi laut juga mengubah keseragaman komunitas  lamun  (Duarte et  al., 2013).  pH sangat  memengaruhi  pertumbuhan  dan  pro- duktivitas  dari  lamun C.  rotundata .  Belum adanya data  mengenai pengaruh dari asidifi- kasi  terhadap  fisiologis  lamun C.  rotundata menjadi salah satu dasar untuk dilakukannya penelitian  ini.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk menganalisis  respons  fisiologis  daun  lamun C.  rotundata yang  meliputi  kandungan klorofil,  laju  fotosintesis,  pertumbuhan  daun C.  rotundata terhadap  pemberian  karbonat (CO 3 2- ) pada kondisi pH yang berbeda.

## II. METODE PENELITIAN

## 2.1. Waktu dan Lokasi Penelitian
Penelitian  telah  dilaksanakan  pada bulan  September–Desember  2017.  Sampel lamun C.  rotundata berasal  dari  Pulau  Pari Kepulauan Seribu, Jakarta. Sampel lamun di- transplantasi  kembali  dalam  toples  di Laboratorium Marine  Habitat ,  Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University.

## 2.2. Alat dan Bahan
Penelitian  menggunakan  alat  sebagai berikut:  pH  meter,  termometer,  lampu  LED
( Light Emitting Diode ), refraktometer , portable  photosynthesis  system  analysis , gelas  ukur,  kantong  sampel,  timbangan, penggaris,  botol  sampel,  pipet  tetes,  sekop, coolbox ,  kamera,  dan  alat  tulis.  Adapun bahan  yang  digunakan  adalah  lamun C. rotundata ,  pupuk  cair,  etanol,  air  laut, akuades dan CO 3 2- .

## 2.3. Prosedur Analisis Data

## 2.3.1.   Pengambilan Sampel
Tunas  lamun C.  rotundata dan substrat  diambil  di  Pulau  Pari  Kepulauan Seribu. C.  rotundata diambil  dengan  meng- gali  tunas  utuh  dengan  rimpang  terhubung pada  sedimen  sebelum  dipindahkan  ke toples.  Sampel  diambil  kemudian  dimasuk- kan ke dalam coolbox dan diaerasi, selanjut- nya  ditransplantasi  ke  toples  (Riniatsih  & Endrawati, 2013). Komposisi pupuk,
karbonat dan lampu disesuaikan dengan hasil penelitian  pendahuluan  yang  dilakukan selama  1  bulan  di  Laboratorium Marine Habitat ,  Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.

## 2.3.2.   Rancangan Penelitian
Toples  digunakan  sebagai  wadah untuk  menumbuhkan  lamun.  Rancangan penelitian  menggunakan  rancangan  acak lengkap  dengan  menggunakan  tabel  acak (Figure 1) . Sebanyak lima belas toples digu- nakan  untuk  3  perlakuan  dengan  5  pengu- langan.  Perlakuan  pH  yang  digunakan mengacu  pada  data  IPCC  (2014),  untuk kontrol  (8,20)  merupakan  kondisi  pH  laut saat  ini,  dalam  perlakuan  pH  sedang  (7,78) merupakan  kondisi  pH  laut  50  tahun  yang akan  datang,  sedangkan  untuk  pH  rendah (7,55)  merupakan kondisi pH  laut 100 tahun yang akan datang. Setiap toples diisi air  laut sebanyak  1,5  L  dan  satu  tunas  lamun C. rotundata. Pengaturan  pH  dilakukan  dengan menambahkan  karbonat  (CO 3 2- ).  Pencahaya- an  menggunakan  lampu  LED  12  watt  yang dipasang  30  cm  di  atas  permukaan  toples setiap 12 jam dalam satu hari. Pergantian air dilakukan setiap 2 minggu sekali, sedangkan
untuk  pemberian  pupuk  dilakukan  setiap  1 minggu sebanyak 1,5 mL.
Figure 1. Research design.

## 2.3.3.   Kandungan Klorofil
Berdasarkan Granger & Izumi (2002) penentuan  konsentrasi  klorofil  diketahui dengan  mengukur  ekstrak  daun  lamun. Setiap  sampel  absorbansi  menggunakan panjang  gelombang  664  nm  dan  647  nm. Kandungan  klorofil  lamun C.  rotundata dihitung dengan rumus:
.............. (1)
.............. (2) Keterangan: E 664 adalah gelombang absorbansi,
E 647 adalah gelombang absorbansi.

## 2.3.4.   Laju Fotosintesis
Laju  fotosintesis  diukur  mengguna- kan Portable  photosynthesis  system  analysis (LI-COR  model  LI-6400)  dengan  penyuntik CO 2 dan  sumber  cahaya  LED.  Data  penga- matan dianalisis dengan pengaturan program berupa kurva respon  intensitas cahaya (PAR = Photosynthesis  Active  Radition )  dari  1– 1200 µmol CO 2 m -2 s -1 (Soleh, 2017).

## 2.3.5.   Laju Pertumbuhan
Pengukuran  laju  pertumbuhan  daun lamun C.  rotundata mengacu  pada  Short  & Duarte  (2001).  Pertumbuhan  daun  lamun C. rotundata dihitung dengan rumus:
............................................... (2)
Keterangan: P adalah  pertumbuhan  daun lamun C.  rotundata (mm/hari), Pt adalah panjang daun akhir (mm), P0 adalah panjang daun  awal  (mm), ∆t adalah  lama  waktu pengamatan (hari).

## 2.3.6.   Kualitas Perairan
Parameter  kualitas  air  yang  diukur meliputi  suhu  menggunakan termometer  dan salinitas  dengan  menggunakan refraktometer (APHA, 2012).

## 2.3.7.   Analisis Statistik
Analisis  data  menggunakan  ANOVA one way pada taraf nyata 5 % pada Microsoft Excel untuk  menentukan  perbedaan  dari kandungan klorofil, laju fotosintesis, dan laju pertumbuhan  daun  lamun C.  rotundata (Suliyanto, 2012).

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1. Hasil
3.1.1.  Kualitas Perairan Kualitas  air  yang  diamati  secara in
situ pada  perlakuan  pH  rendah,  sedang  dan kontrol (Table  1). Nilai  rata-rata  suhu  ber- kisar antara 26,58 o C–26,61 o C. Suhu tertinggi dijumpai  pada  perlakuan  pH  sedang,  dan suhu  terendah  pada  perlakuan  pH  kontrol. Nilai  rata-rata  salinitas  pada  penelitian  ini berkisar antara 33,26 psu–33,33 psu.
3.1.2.   Kandungan Klorofil C. rotundata Hasil pengukuran kandungan klorofil
a  dan  b C.  rotundata (Figure  2) perlakuan pH  kontrol  (8,20)  sebesar  1,77  mg/g  dan 1,43  mg/g  berada  pada  kisaran  1,62–1,97 mg/g  (klorofil  a)  dan  1,21–1,94  mg/g (klorofil  b).  Kandungan  klorofil  a  dan  b C. rotundata perlakuan pH 7,78 sebesar 1,56 mg/g  dan  mg/g  1,24  berada  pada  kisaran  0– 2,60  mg/g  (klorofil  a)  dan  0–1,94  mg/g (klorofil  b).  Kandungan  klorofil  a  dan  b C. rotundata perlakuan  pH  7,55  sebesar  0,58 mg/g  dan  0,59  mg/g  berada  pada  kisaran  0– 1,83  mg/g  (klorofil  a)  dan  0–1,44  mg/g (klorofil b). Hasil uji ANOVA menunjukkan rata-rata  hasil  kandungan  klorofil  a  pada daun lamun berbeda signifikan (P < 0,05)
Table 1. The value range of physical and chemical parameters of water quality.
Water quality pH treatments L (7.55) M (7.78) C (8.20) Temperature ( o C) 26.60 ± 0.41 26.61 ± 0.42 26.58 ± 0.42 Salinity (psu) 33.27 ± 2.08 33.33 ± 2.12 33.26 ± 2.06
Information:  The  values  are  presented  as  mean  ±  standard  deviation.  L=  low  pH,  M= medium pH, C= control.
Figure 2. The average hlorophyll content of C. rotundata.
dan rata-rata hasil kandungan klorofil b pada daun  lamun  tidak  berbeda  signifikan  (P  > 0,05).
3.1.3.   Laju Fotosintesis C. rotundata Hasil  pengukuran  laju  fotosintesis lamun C.  rotundata (Figure  3) pada perlakuan  pH  kontrol  (8,20)  sebesar  8,89 µmol CO 2 m -2 s -1 berada pada kisaran 6,59– 11,45 µmol CO 2 m -2 s -1 .  Laju fotosintesis C. rotundata pada  perlakuan  pH  7,78  sebesar 6,85  µmol  CO 2 m -2 s -1 berada  pada  kisaran 5,51–8,36 µmol CO 2 m -2 s -1 . Laju
fotosintesis C.  rotundata pada  perlakuan  pH 7,55  sebesar  6,87  µmol  CO 2 m -2 s -1 berada pada  kisaran  0–13,20  µmol  CO 2 m -2 s -1 . Hasil  uji  ANOVA  menunjukkan  rata-rata hasil  laju  fotosintesis C.  rotundata tidak signifikan (P > 0.05).
Figure 3. The average photosynthetic rate of C. rotundata.
3.1.4.   Laju Pertumbuhan Daun C. rotundata
Berdasarkan  data  laju  pertumbuhan daun C. rotundata (Figure 4) pada perlakuan pH kontrol (8,20) memiliki laju pertumbuhan daun C.  rotundata sebesar  2,74  mm/hari yang berada pada kisaran 1,00–5,56 mm/hari. Laju pertumbuhan daun C. rotundata pada  perlakuan  pH  7,78  sebesar 2,51  mm/hari  yang  berada  pada  kisaran 1,53–3,56  mm/hari.  Laju  pertumbuhan  pada
pH  7,75  sebesar  1,72  mm/hari  yang  berada pada  kisaran  0,70–2,50  mm/hari.  Hasil  uji ANOVA  pertumbuhan  daun C.  rotundata menunjukkan  rata-rata  hasil  tidak  signifikan (P > 0,05).
Figure  4.  The average growth  rate leaves of C. rotundata.

## 3.2. Pembahasan
Karbonat  dimasukkan  ke  dalam  per- lakuan pH 7,55 dan pH 7,78 bereaksi dengan kalsium  (Ca)  menjadi  kalsium  karbonat (CaCO 3 ).  Hal  ini  terlihat  adanya  butiran- butiran  kapur  pada  kolom  air.  Nontji  (1993) menyatakan bahwa pada dasarnya pH air laut akan  kembali  pada  nilai  semula  karena adanya  sistem  karbondioksida  yang  ber- fungsi sebagai penyangga. Selama satu bulan pengamatan  suhu  tidak  terjadi  perubahan nilai  yang  signifikan.  Nilai  suhu  yang didapatkan  tergolong  rendah  dan  masih dalam  kisaran  suhu  optimal  untuk  per- tumbuhan  lamun,  hal  ini  disebabkan  pada bulan  November–Desember  termasuk  ke dalam musim hujan. Menurut Effendi (2003) salah satu faktor yang memengaruhi suhu air laut  adalah  musim.  Pengukuran  salinitas selama  satu  bulan  tidak  terjadi  peningkatan atau penurunan signifikan, hal ini disebabkan tidak  adanya  aktivitas  percampuran  dengan air tawar. Kisaran nilai salinitas yang didapat masih dalam nilai optimum untuk kehidupan lamun.  Salinitas  optimal  untuk  pertumbuhan lamun berkisar antara 25–35 psu (Supriharyono, 2009).
Selama  satu  bulan  pengamatan  dite- mukan pada perlakuan pH 7,55 ada sebanyak 4  daun  yang  gugur,  pada  perlakuan  pH  7,78 ada  sebanyak  5  daun  dan  pada  perlakuan kontrol  (8,20)  hanya  2  daun  yang  gugur selama  satu  bulan.  Lambers et  al. (1998) menyebutkan  bahwa  lamun  merespons  peru- bahan  lingkungan  hingga pada kondisi  stres. Kondisi  stres  terjadi  pada  hitungan  hari hingga  bulan.  pH  merupakan  salah  satu faktor  yang  menjadi  penyebab  hilangnya klorofil  pada  daun  tumbuhan.  Asidifikasi berdampak pada hilangnya unsur magnesium (Mg), sehingga akan terjadi perubahan warna pada  daun.  Pigmen  klorofil  yang  berwarna hijau  akan  membentuk  pigmen pheophityn yang  berwarna  cokelat.  Fennema  (1996) menambahkan  pada  media  asam  (pH  <  8) klorofil  tidak  stabil,  penurunan  pH  pada  air laut  yang  terjadi  ketika  pemanasan  jaringan daun  mengakibatkan  hilangnya  pigmen klorofil.
Aktivitas fotosintesis lamun C.
rotundata dipengaruhi  oleh  klorofil  sebagai penyerap  cahaya.  Daya  serap  sinar  lampu yang  rendah  pada  fotosintesis  dipengaruhi oleh  kandungan  klorofil-a  dan  b  pada perlakuan pH  7,55 klorofil-a dan  b  memiliki nilai  yang rendah,  sehingga berdampak pada laju  fotosintesis  yang  rendah.  Berbeda dengan  pada  perlakuan  pH  7,78  yang memiliki  nilai  klorofil-a  dan  b  cukup tinggi, namun  laju  fotosintesisnya  rendah  diduga daun muda yang baru tumbuh memiliki daya serap  CO 2 yang  kecil.  Perlakuan  pH  kontrol (8,20)  klorofil-a  dan  b  memiliki  nilai  yang tinggi,  sehingga  berdampak  pada  laju  foto- sintesis  yang  tinggi.  Ketersediaan  karbon- dioksida  (CO 2 )  dalam  air  laut  memengaruhi aktivitas  fotosintesis  lamun C.  rotundata (Lambers et  al., 1998).  Laju  fotosintesis lamun tergantung pada difusi karbon melalui kutikula  pada  permukaan  daun  (Kawaroe et al., 2016).  Lamun  memperoleh  karbon- dioksida  (CO 2 )  dari  air  laut  yang  memiliki konsentrasi karbon anorganik tinggi (Hein  & Sand-Jensen, 1997).
Secara  tidak  langsung  perbedaan  pH air  laut  memengaruhi  pertumbuhan  daun lamun C.  Rotundata , tingginya  nilai pertum- buhan  daun  lamun  berbanding  lurus  dengan nilai  kandungan  klorofil  dan  nilai  laju  foto- sintesis.  Penelitian  menunjukkan  pada  per- lakuan  pH  7,55  saat  lamun  sudah  tumbuh pada  ukuran  ±  5  cm  beberapa  daun  terlihat menguning.  Hal  ini  mengindikasikan  bahwa kandungan  klorofil  lamun  sudah  hilang, sehingga  daun  lamun  tersebut  tidak  dapat tumbuh lagi. Banyak faktor dapat memenga- ruhi  pertumbuhan  lamun  (Dunton,  1994). Pertumbuhan  daun  lamun  dipengaruhi  oleh faktor  fisiologis,  metabolisme,  lingkungan (Azkab  &  Kiswara,  1994)  dan  nutrien  (Lee & Dunton, 2000). Vonk et al. (2015) menya- takan  bahwa  ukuran  tubuh  lamun  juga memengaruhi  pertumbuhan  lamun.  Lamun C.  rotunda memiliki  ukuran  tubuh  dan  luas penampang  daun  yang  kecil,  sehingga memiliki daya serap yang kecil.

## IV. KESIMPULAN
Perbedaan  pH  air  laut  memengaruhi kandungan  klorofil-a  dan  b,  laju  fotosintesis dan  laju  pertumbuhan  daun.  Kandungan klorofil-a  dan  b,  laju  fotosintesis  dan  laju pertumbuhan  daun  lamun C.  rotundata per- lakuan  pH  kontrol  lebih  besar  dibandingkan dengan  perlakuan  pH  7,78  dan  pH  7,55.  Uji ANOVA menunjukkan hanya klorofil-a yang berbeda  signifikan.  Rendahnya  pH  air  laut terbukti  menghambat  aktivitas  fisiologis daun lamun C. rotundata.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  mengucapkan  terima  kasih kepada Ibu Dr. Mujizat Kawaroe dan Ibu Dr. Neviaty  P.  Zamani  yang  telah  membantu mendanai  dan  memfasilitasi  kegiatan  riset serta  semua  pihak  yang  telah  berkontribusi selama kegiatan berlangsung.

## DAFTAR PUSTAKA
American Public Health Association (APHA).  2012.  Standar  method  for the  examination  of  water  and  waste wayer.  22  Edition . Environmental Protection Agency Press. Washington DC. 1360 p.
Azkab,  M.H.  &  W.  Kiswara.  1994.  Struktur komunitas  biologi  padang  lamun  di pantai  selatan  lombok  dan  kondisi lingkungannya.  Pusat  Penelitian  dan Pengembangan Oseanologi LIPI. Jakarta. 124 p.
Bastyan,  G.R.  &  M.L.  Cambridge.  2008. Transplantation  as  a  method  for restoring  the  seagrass Posidonia australis . Estuarine,  Coastal  and Shelf Science , 79: 289–299.
https://doi.org/10.1016/j.ecss.2008.04 .012
Borum,  J.,  O.  Pederson,  L.  Kotulo,  M.W. Fraser,  J.  Statton,  T.D.  Colmer,  & G.A.  Kendrick.  2016.  Photosynthetic response  to  globally  increasing  CO 2 of  co-occuring  temperate  seagrass species. Plant, Cell and Environment,
39: 1240-1250.
https://doi.org/10.1111/pce.12658
Canadell,  J.P.,  C.  Le  Quere,  M.R.  Raupach,
C.B.  Field,  E.T.  Buitenhuis,  P.  Ciais, T.J.  Conway,  N.P.  Gillett,  R.A.
Houghton,  &  G.  Marland.  2007. Contributions to accelerating
atmospheric CO 2 growth from economic  activity,  carbon  intensity, and  efficiency  of  natural  sinks. Proc Natl  Acad  Sci, 104(47):  18866- 18870.
https://doi.org/10.1073/pnas.0702737
104
Duarte,  C.M.,  I.E.  Hendriks,  T.S.  Moore, Y.S.  Olsen,  A.  Steckbauer,  L. Ramajo,  J.  Carstensen,  J.A.  Trotter,
&  M.  Mcculloch.  2013.  Is  ocean acidification an
open-ocean syndrome? Understanding anthropogenic  impacts  on  seawater pH. Estuarine  and  Coastal, 36:  221– 236.  https://doi.org/10.1007/s12237- 013-9594-3
Dunton,  K.H.  1994.  Seasonal  growth  and biomass  of  the  subtropical  seagrass Halodule  wrightii in  relation  to continuous measurements of underwater irradiance. Marine Biology , 120: 479-489. https://doi.org/10.1007/BF00680223
Effendi,  H.  2003.  Telaah  Kualitas  Air  Bagi
Pengelolaan Sumberdaya dan Lingkungan Perairan. Kanisius. Yogyakarta. 256 p.
Fabricius,  K.E., C.  Langdon, S.  Uthicke,  C. Humphrey,  S.  Noonan,  G.  De'ath, R. Okazaki,  N.  Muehllehner, M.S.  Glas,
&  J.M.  Lough.  2011. Losers  and winners in coral reefs acclimatized to elevated carbon dioxide concentrations. Nature Climate Change, 1: 165-169.
https://doi.org/10.1038/nclimate1122
Fabry, V.J., J.B. McClintock, J.T. Mathis, &
J.M. Grebmeier. 2009. Ocean acidification  at  high  latitudes:  The Bellwether. Oceanography, 22(4): 160–171.
https://doi.org/10.5670/oceanog.2009 .105
Fennema. 1996. Food Chemitry 3 th edition.
Marcel  Dekker.  Inc  New  York.  1067
p.
Fourqurean, J.W., C.M. Duarte, H.
Kennedy,  &  M.  Marbà.  2012.
Seagrass  ecosystems  as  a  globally significant carbon stock. Nature Geoscience, 1: 1-5.
https://doi.org/10.1038/ngeo1477
Granger, S. & H. Izumi. 2002. Water quality measurement  methods  for  seagrass habitats. Elsevier  Science, 20:  393- 405. https://doi.org/10.1016/B978- 044450891-1/50021-9
Gullstrom  M.,  L.D.  Lyimo,  M.  Dahl,  G.S.
Samuelsson, M. Eggertsen, E.
Enderberg,  L.M.  Rasmusson,  H.W. Linderholm, A. Knudby, S. Bandeira,
L.M  Nordlund,  &  M.  Bjork.  2017. Blue  Carbon  Storage  in  Tropical
Seagrass Meadows Relates to
Carbonate  Stock  Dynamics,  Plant– Sediment  Processes,  and  Landscape Context:  Insights  from  the  Western Indian  Ocean. Springer  Nature, 21:
551-566.
https://doi.org/10.1007/s10021-017-
0170-8 Hein,  M.  &  K.  Sand-Jansen.  1997.  CO 2 Increases oceanic
primary production. Nature , 388: 526-527.
https://doi.org/10.1038/41457
Intergovernmental Panel on  Climate Change
(IPCC). 2013. Climate Change 2013: The Physical Science Basis. Contribution  of  Working  Group  I  to
The  Fifth  Assessment  Report  of  The Intergovernmental  Panel  on  Climate Change. Cambridge University Press. Cambridge. 1585 p.
Intergovernmental Panel on  Climate Change (IPCC). 2014. Climate Change 2014:
Mitigation of Climate Change.
Contribution of Working Group III to the  Fifth  Assessment  Report  of  the Intergovernmental  Panel  on  Climate Change. Cambridge University Press. Cambridge. 1434 p.
Knutzen, J. 1981. Effects of decreased pH on marine  organisms. Marine  Pollution Bulletin, 12: 25–29. https://doi.org/10.1016/0025- 326X(81)90136-3
Lambers, H, F.S. Chapin, & T.L. Pons. 1998. Plant physiological
ecology. Springer. New York. 605 p.
Lee,  K.S.  &  K.H.  Dunton.  2000.  Effects  of nitrogen  enrichment  on  biomass allocation, growth,
and leaf morphology of the seagrass Thalassia testudinum. Marine Ecology
Progress, 196: 39–48.
https://doi.org/10.3354/meps196039
Mackereth,  F.J.H.,  J.  Heron,  &  J.F.  Tailing.
1989.  Water  analysis.  freshwater biological association . Liverpool
University  Press.  Liverpool.  456-456 p.
Nontji, A. 1993. Laut nusantara. Djambatan. Jakarta. 368 p.
Ow,  Y.X.,  C.J.  Collier,  &  S.  Uthicke.  2015. Response  of  three  tropical  seagrass species  to  CO 2 enrichment. Marine Biology , 162: 1005-1007. https://doi.org/10.1007/s00227-015- 2644-6 Riniatsih  I. &  H.  Endrawati.  2013. Pertumbuhan lamun hasil transplantasi jenis Cymodocea rotundata di  padang  lamun  teluk awur  jepara. Buletin  Oseanografi Marina, 2: 34-40. https://doi.org/10.14710/buloma.v2i1. 6924
Sarmiento,  J.L.  &  N.  Gruber.  2006.  Ocean biogeochemical  dynamics.  Princeton University Press. New Jersey. 503 p. Short,  F.T.  &  C.M.  Duarte.  2001.  Methods for  the  measurement  of  seagrass  and growth  production.  di  dalam:  Short FT, Coles RG, editor. Global seagrass research  methods. Elsevier  Science , 8: 155-182. https://doi.org/10.1016/B978- 044450891-1/50009-8
Short, F.T., T. Carruters, W. Dennison, & M.
Waycott.  2007.  Global  seagrass distribution and diversity: a bioregion model. J.  of  Experimental  Marine Biology  and  Ecology, 350:  3–20.
https://doi.org/10.1016/j.jembe.2007. 06.012 Soleh, M.A. 2017. Overestimation measurement  of  gas  exchange  by using Portable Photosynthesis
Analyzer LI-6400. J. Kultivasi , 16(1):
255-259. https://doi.org/10.24198/kltv.v16i1.1
1546
Suliyanto. 2012. Analisis statistik pendekatan  praktis  dengan  Microsoft excel. Andi  offset.  Yogyakarta.  232 p.
Supriharyono.  2009.  Konservasi  ekosistem sumberdaya  hayati.  Pustaka  Pelajar. Yogyakarta. 428 p.
Vonk,  J.A.,  M.J.A.  Christianen,  J. Stapel,  & K.R.  O’Brien.  2015.  What  lies beneath: why knowledge of belowground  biomass  dynamic  is crusial to effective seagrass management. Ecological  Indicators , 57: 259-267. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2015 .05.008
Waldbusser,
G.G., E.P. Voigt, H. Bergschneider,  M.A.  Green,  &  R.I. Newell.  2011.  Biocalcification  in  the eastern  oyster  (Crassostrea  virginica) in  relation  to  long-term  trends  in Chesapeake  Bay  pH. Estuaries  and Coasts, 34(2): 221–231. http://doi.org/10.1007/s12237-010- 9307-0
Widdicombe,  S.  &  J.I.  Spicer.  2008. Predicting  the  impact  of  ocean
acidification  on  benthic  diversity. What can animal physiology tell us?, J.  Experimental  Marine  Biolology Ecology, 366: 187–197. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2008. 07.024 Zeebe, R.E. & D. Wolf-Gladrow. 2001. CO 2 in  seawater:  equilibrium,  kinetics, isotopes. Elsevier Science.
Netherlands. 360 p.
Zimmerman,  R.C.,  V.J.  Hill,  M.  Jinuntuya, B.  Celebi,  D.  Ruble,  M.  Smith,  T. Cedeno,  &  W.M.  Swingle.  2017. Experimental  impacts  of  climate warming  and  ocean  carbonation  on eelgrass  Zoostera  marina. Marine Ecology Progress Series, 566: 1-15. https://doi.org/10.3354/meps12051
Received  : 6 July 2018 Reviewed : 27 February 2019 Accepted  : 18 August 2020