Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 4 (2), 2022, 137-143
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index

## PENGARUH PEMBERIAN PAKAN BUATAN PADA UMUR YANG BERBEDA
PADA LARVA IKAN BETOK Anabas testudineus BLOCH

## EFFECT OF WEANED WITH ARTIFICIAL FEED AT DIFFERENT AGES OF BETOK FISH Anabas testudineus BLOCH LARVAE
Artin Indrayati 1 , Mia Setiawati 2* , Muhammad Agus Suprayudi 2 , Kusriyati 1
1 Sekolah Usaha Perikanan Menengah Negeri Kota Agung Jl. Pantai Harapan, Way Gelang, Kota Agung Barat, Tanggamus - Lampung
2 Prodi Ilmu Akuakultur Institut Pertanian Bogor Jl. Agatis Kampus IPB Dramaga - Bogor
Email: miasetia@apps.ipb.ac.id, artin.supmka@gmail.com
(Diterima: 01 Agustus 2022; Diterima setelah perbaikan: 08 Desember 2022: Disetujui: 08 Desember 2022)

## ABSTRAK
Penelitian  untuk  mengetahui  pengaruh  pakan  buatan  yang  diberikan  pada  umur  yang  berbeda dilakukan pada larva ikan Betok Anabas testudineus Bloch. Studi ini terdiri dari lima perlakuan dan tiga ulangan. Larva mendapat terapi pakan yang sama dengan perbedaan awal pemberian pakan buatan pada hari  ke-15,  ke-20,  dan  ke-25  setelah menetas  (masing-masing W15,  W20,  dan  W25). Artemia (AR) dan pakan buatan saja (MD) diberikan pada larva pada perlakuan kontrol sampai akhir penelitian (35 hari setelah menetas). Larva ikan yang berumur lebih dari 10 hari dibesarkan di 15 akuarium dengan volume masing-masing 10 liter, masing-masing menampung 10 L- 1 ikan. Larva ikan berumur 10 hari dipelihara  pada  15  akuarium  (volume  10  liter)  dengan  kepadatan  10  ekor  L -1 .  Pengaruh  pemberian pakan buatan mikrodiet pada larva ikan Betok ( A. testudineus ) pada umur yang berbeda menunjukkan pertumbuhan yang tidak berbeda nyata pada umur 20 dan 25 hari setelah menetas berdasarkan nilai rasio DNA:RNA. Sedangkan yang diberi mikrodiet sejak awal memiliki rasio DNA:RNA tertinggi yang diduga menunjukkan kondisi stres fisiologi karena terhambatnya perkembangan saluran pencernaan.
Kata kunci: Anabas testudineus, faktor kondisi, rasio RNA:DNA, penyapihan.

## ABSTRACT
Research to determine the influence of artificial feed given at different ages was carried out on the larvae of the Betok Anabas testudineus Bloch fish. Five treatments and three replications made up this study. The same feeding treatment is given to the larvae with a difference in the beginning of the time of artificial feeding, namely on the 15th day after hatching (W15), the 20th day after hatching (W20) and the 25th day (W25) after hatching. In the control treatment, the larvae were given natural feed in the form of Artemia (AR) and artificial feed only (MD) until the end of the study (the 35th day after hatching). Larvae of 10-day-old fish are kept in 15 aquariums (volume 10 liters) with a density of 10 fry L -1 . The effect of artificial feeding of microdietes on the larvae of betok fish (A. testudineus) at different ages showed no markedly different growth at the age of 20 and 25 days after hatching based on DNA:RNA ratio values. Meanwhile, those who were given microdiet from the beginning had the highest DNA:RNA ratio which was suspected to indicate a physiological stress condition due to inhibition of the development of the digestive tract.
Keywords: Anabas testudineus, condition factor, RNA:DNA ratio, weaning

## PENDAHULUAN
Setelah diakui sebagai salah satu spesies yang berhasil didomestikasi, budidaya ikan betok (Anabas  testudineus  Bloch) berkembang  pesat  di  Indonesia.  Ikan  betok  sudah  berhasil dipijahkan secara semi buatan dengan derajat pembuahan dan penetasan telur mencapai 100 (Morioka et al ., 2009), namun laju sintasan benih berumur sekitar 1 bulan masih rendah yaitu
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 4 (2), 2022, 137-143
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
dibawah 20%. (Morioka et al , 2009) juga menyebutkan bahwa sintasan larva betok umur 35 hari hanya mencapai 16,7% dengan diberi pakan buatan.
Makanan alami biasanya diberikan kepada larva ikan segera setelah mulutnya terbuka sampai larva  dapat  menyesuaikan  diri  dengan  pakan  buatan.  Pakan  alami  ini  langsung  diberikan karena mengandung enzim yang membantu pencernaan larva yang sistem pencernaannya masih berkembang. Ketika larva beralih dari mengonsumsi makanan alami ke pakan buatan, larva harus terlebih dahulu menyesuaikan (menyapih) untuk membiasakan makan makanan buatan dan mencernanya dengan baik. Larva ikan kakap ( Dicentrarchus labrax ) yang terlalu dini  diberi  pakan  buatan  mikropartikulat  yaitu  pada  hari  ke-15  memiliki  pertumbuhan  dan sintasan yang rendah (Suzer et al ., 2011). Menurut (Amornsakun et al ., 2005), larva ikan betok mulai  mengkonsumsi  pakan  buatan  pada  umur  16  hari,  dan  (Yulintine et  al ,  2012) menyarankan  untuk  memulai  pemberian  pakan  buatan  pada  hari  ke  25  setelah  menetas berdasarkan perkembangan sistem pencernaan. Pembenihan ikan betok di Kalimantan telah mulai memberi makan larva berumur tujuh hari secara artifisial. Hal ini dapat menjadi salah satu sebab rendahnya laju pertumbuhan dan sintasan benih ikan betok.
Penggunaan  pakan  alami  pada  pemeliharaan  larva  betok  tidak  selamanya  dapat  terus diberikan karena ketersediaan sumber pakan alami yang tidak selalu kontinyu, serta beberapa spesies  pakan  alami  mahal  harganya.  Selain  itu  proses  kultur  pakan  alami  membutuhkan peralatan dan perawatan khusus dalam penyediaannya serta pada proses budidaya larva ikan betok  membutuhkan  pakan  buatan  yang  lebih  lengkap  nutrientnya  dibanding  pakan  alami. Sehingga larva memerlukan waktu beradaptasi untuk dapat beralih dari memakan pakan alami ke  pakan  buatan  ( weaning ).  Dalam  hal  ini,  studi  ini  perlu  dilaksanakan  untuk  mengetahui pengaruh pemberian pakan buatan pada larva betok yang disapih dari pakan alami ke pakan buatan pada umur  yang  berbeda.  Dengan menginduksi  aktivasi  banyak enzim pencernaan, komposisi  pakan  dapat  mempengaruhi  bagaimana  sistem  pencernaan  berkembang (Zambonino-Infante et  al .,  2008).  Jika  larva  mampu  beradaptasi  dengan  pemberian  pakan buatan  sejak  dini,  maka  jumlah  pakan  alami  yang  diberikan  dapat  dikurangi,  sehingga produktivitas penetasan meningkat. Selain itu, tidak akan ada lagi pemberian pakan buatan yang  terjadi  terlalu  dini,  yang  dapat  mempengaruhi  kelangsungan  hidup  dan/atau  tingkat pertumbuhan benih ikan betok.

## BAHAN DAN METODE
Larva ikan betok yang digunakan dalam penelitian pada bulan Juli tahun 2015 ini berasal dari pemijahan  semi  artifisial  di  Laboratorium  Budidaya  Perikanan  Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor. Induk betok yang digunakan berasal dari BBAT Mandiangin Kalimantan  Selatan  yang  telah  diaklimatisasi  selama  enam  bulan.  Saat  pemijahan perbandingan  induk  betina  dan  jantan  yang  digunakan  berjumlah  1:4  ekor.  Stok  larva dibesarkan dalam satu wadah dengan kepadatan 100 L -1 , diberikan Rotifera sebagai pakan alami pada hari kedua setelah menetas, kemudian Artemia sebagai pakan lanjutan pada hari ketujuh. Benih berumur 10 hari dipindahkan ke wadah perlakuan dengan kepadatan 10 L -1 . Wadah perlakuan adalah bak terpal berukuran 3 x 1,5 m yang dapat menampung hingga 18 buah  akuarium  kecil  berukuran  30  cm  x  25  cm  x  25  cm  berisi  10  liter  air.  Semua  wadah percobaan (akuarium kecil) ditempatkan dalam bak terpal berisi air yang dipasang pemanas dengan termostat sehingga suhu dapat dengan mudah dikontrol untuk menjaga suhu stabil pada  media.  Sampai  benih  berumur  35  hari,  perlakuan  pada  penelitian  ini  tetap  dilakukan. Pakan alami berupa Artemia dengan kadar protein 46,99% digunakan sebagai pakan hidup dalam penelitian ini bersama pakan buatan mikrodiet berukuran 200- 400μ dengan komposisi pakan mikrodiet disajikan pada Tabel 1.
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 4 (2), 2022, 137-143
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index

## Tabel 1. Hasil proksimat pakan uji (% bobot kering)
Komposisi Nutrien (%) Jenis Pakan Artemia Mikrodiet Protein 65.06 60.93 Lemak 14.45 12.84 Abu 5.06 7.35 Serat Kasar 3.42 2.52 BETN 12.01 16.36
Ket : BETN = Bahan ekstrak tanpa nitrogen
Dua minggu sebelum perlakuan, pemijahan induk betok secara semi buatan dilakukan dengan cara menyuntikkan ovaprim dengan dosis 0,1 mL kg -1 BB ke dalam induk ikan yang sudah matang gonad. Larva yang menetas dibesarkan dalam wadah stok dengan kepadatan 100 L - 1 dengan  pakan  Rotifera  pada  hari  kedua  dan  Artemia  pada  hari  ketujuh.  Setelah  larva berumur sepuluh hari, larva dipindahkan ke akuarium perlakuan dengan kepadatan 10 ekor L - 1 . Jumlah akuarium perlakuan sebanyak 15 akuarium dengan volume 10 liter air digunakan untuk memantau pertumbuhan larva. Pakan alami diberikan secara adlibitum berupa Artemia dengan  densitas  5  individu  mL -1 .  Frekuensi  pemberian  pakan  diberikan  sehari  empat  kali sampai kenyang tanpa campuran Artemia, berikut jenis perlakuan yang diberikan:
a.  Perlakuan  pemberian  pakan  buatan  dimulai  pada  hari  kelima  belas  setelah  penetasan dengan kode perlakuan W15
b.  Perlakuan  pemberian  pakan  buatan  dimulai  pada  hari  kedua  puluh  setelah  penetasan dengan kode perlakuan W20
c.  Perlakuan pemberian pakan buatan dimulai pada hari kedua puluh lima setelah penetasan dengan kode perlakuan W25
d.  Perlakuan pemberian pakan alami artemia dengan kode perlakuan AR
e.  Perlakuan pemberian pakan buatan mikrodiet dengan kode perlakuan MD
Air media pemeliharaan larva disiapkan dalam sebuah tandon bak fiber bulat dengan volume 1,5 m 3 . Persiapan air media pemeliharaan dengan cara diendapkan dan selanjutnya endapan disipon.  Berikutnya  aerasi  dan  pemanas  ( heater )  dipasang  pada  tandon  sehingga  tercapai kualitas  air  yang  dibutuhkan.  Persiapan  air  media  pemeliharaan  pada  tandon  memerlukan waktu tiga hari dan dipertahankan kuantitas dan kualitas airnya selama penelitian berlangsung untuk digunakan saat penyiponan dan pergantian air pada akuarium penelitian.  Kualitas air akuarium selama penelitian ini antara 26 dan 27,50 0 C, DO 5,2 dan 7,2 miligram per liter, pH 6,5-7,4, dan NH3 0,001-0,005 miligram per liter, yang semuanya masih dalam kisaran yang dibutuhkan  untuk  produksi  ikan  betok  (Bunasir et  al., 2014).  Pengamatan  kematian  yang terjadi selama perlakuan dicatat dan pada akhir pemeliharaan pada hari ke-35 jumlah larva yang  hidup  dihitung  untuk  pengukuran  bobot  serta  panjang  larva.  Larva  ditimbang  dengan neraca analitik yang memiliki ketelitian 0,01, dan kertas milimeter digunakan untuk mengukur panjang larva. Faktor kondisi ikan (Fulton), yang dihitung menggunakan rumus berikut, juga didasarkan pada berat dan panjang larva:
K = 100 x (W/L 3 )
di mana W mewakili berat larva (dalam gram) dan L mewakili panjangnya (dalam sentimeter) (Froese,  2006).  Selain  faktor  kondisi  ikan,  parameter  kinerja  pertumbuhan  pada  larva  dan juvenil  ikan,  pertumbuhan  dan  kondisi  nutrisi  dapat  diestimasi  dengan  mengukur  rasio RNA:DNA jaringan (Caldarone et al ., 2006). Ekstraksi dan pengukuran asam nukleat dilakukan untuk  memperkirakan  jumlah  asam  nukleat  (RNA  dan  DNA)  yang  ada.  Reagen  Genezol digunakan untuk mengekstraksi RNA, sedangkan Ultra Clean Wash Buffer digunakan untuk mengekstraksi  DNA.  Selain  itu,  GENE  Quant  digunakan  untuk  mengukur  RNA  dan  konten
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 4 (2), 2022, 137-143
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
DNA  yang  diekstraksi  pada  630  nm,  dan  data  diaplikasikan  untuk  menentukan  rasio RNA:DNA.
Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 5 perlakuan dan 3 ulangan digunakan untuk menguji hasil studi. Statistik digunakan untuk menguji setiap parameter studi. Aplikasi MS digunakan untuk mentabulasi data yang dikumpulkan. SPSS 18 digunakan untuk analisis Office Excel 2013 dan uji ANOVA. Dengan tes tindak lanjut Duncan, terapi yang berbeda diperiksa secara lebih rinci.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Pada  hari  ke-35,  dilakukan pengukuran  pada benih betok pada  panjang  rata-rata  akhir  (L), bobot akhir (W), faktor kondisi (K), konsentrasi RNA, konsentrasi DNA, dan rasio RNA:DNA (RD) untuk menilai kinerja proses pertumbuhan larva.
Tabel 2. Rerata panjang (L), bobot akhir (W), faktor kondisi (K), konsentrasi RNA, konsentrasi DNA dan rasio RNA:DNA (RD) larva ikan betok pada perlakuan pemberian pakan buatan pada hari yang berbeda Parameter Perlakuan pemberian pakan buatan pada larva ikan betok W15 W20 W25 AR MD L (cm) 1,590±0,220 ab 1,840±0,183 b 1,680±0,093 ab 1,800±0,188 ab 1,270±0,241 a W (g) 0,770±0,009 ab 0,810±0,023 b 0,780±0,007 ab 0,780±0,020 ab 0,740±0,007 a K 2,310±0,001 2,500±0,001 2,1830±0,001 1,750±0,000 2,060±0,001 RNA (μg) 0,018±0,001 bc 0,020±0,001 c 0,017±0,001 bc 0,016±0,000 b 0,012±0,001 a DNA (μg) 0,120±0,003 c 0,150±0,001 e 0,140±0,001 d 0,110±0,001 b 0,070±0,283 a RD 0,150±0,003 b 0,130±0,005 a 0,120±0,013 a 0,150±0,002 b 0,170±0,008 c
Ket : Efek perlakuan yang berbeda nyata ditunjukkan dengan huruf yang berbeda pada baris yang sama (p<0,05). Nilai rata-rata dan standar deviasi diwakili oleh nilai yang diberikan.
Berdasarkan hasil pengukuran panjang akhir larva ikan (Tabel 2), perlakuan MD memiliki nilai yang  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  W20  tetapi  tidak  berbeda  nyata  dengan  perlakuan W15,  W25,  atau  AR.  Selain  itu,  terdapat  perbedaan  bobot  larva  antara  perlakuan  MD  dan perlakuan W20 tetapi tidak antara perlakuan W15, W25, atau AR. Temuan perhitungan faktor kondisi  Fulton  (Tabel  1)  mengungkapkan  hasil  yang  tidak  berbeda  secara  substansial  di semua  perlakuan  dengan  kisaran  nilai  1,75-2,50,  menunjukkan  bahwa  semua  larva  dalam kondisi baik yang ditunjukkan dengan nilai <1  (Froese, 2006). Perlakuan MD memiliki nilai konsentrasi  RNA  terendah  dan  perlakuan  W20  mempunyai  nilai  tertinggi,  namun  nilai konsentrasi RNA cenderung meningkat seiring dengan pertumbuhan panjang dan bobot.
Konsentrasi DNA memiliki nilai bervariasi dan berbeda nyata pada masing – masing perlakuan. Jika  nilai  RNA  dan  DNA  dibandingkan  maka  hasil  ratio  RNA:DNA  menunjukkan  hasil  yang bertolak belakang dengan hasil pengukuran parameter pertumbuhan yang lain. Hal ini paling tampak  mencolok  pada  perlakuan  MD  yang  memiliki  nilai  bobot,  panjang,  faktor  kondisi  K, konsentrasi  RNA  dan  konsentrasi  DNA  terendah  dibandingkan  perlakuan  yang  lain  justru memiliki ratio RNA:DNA tertinggi. Hasil serupa juga ditemukan pada studi lingkungan daerah asuhan  ( nursery  ground )  ikan  sebelah  ( Pleuronectes  platessa )  dan Limanda  limanda menunjukkan  kurangnya  keterkaitan  antara  rasio  RNA:DNA  dengan  faktor  kondisi  K  (De Raedemaecker et  al .,  2012).  Hal  ini  juga  ditemukan  pada  beberapa  juvenile  ikan  di  pesisir Portugal  (Vasconcelos et  al ,  2009)  dan  juvenile black  bream ( Acanthopagrus  butcheri ) (Walther et  al .,  2010).  Lebih  lanjut  dijelaskan    bahwa  pada  migrasi American  glass  eel (Laﬂamme & Bernatchez, 2012) dimana hasil rasio RNA:DNA yang tinggi dapat merefleksikan
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 4 (2), 2022, 137-143
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
stres fisiologi dalam menghadapi tekanan lingkungan yang ekstrim (aklimatisasi osmoregulasi yang  panjang  pada  lingkungan  estuari  yang  dinamis)  yang  dibarengi  dengan  nilai  faktor kondisi  K  yang  rendah  juga.  Beberapa  penelitian  pada  kondisi  pemeliharaan  ikan  masih ditemukan variasi antar individu yang belum dapat dijelaskan terkait parameter asam nukleat ini.
Umur dan stadia larva diduga dapat mempengaruhi kandungan RNA:DNA ratio sebagai salah satu parameter pertumbuhan (Kerambrun et al ., 2012). Dipertegas oleh (Chícharo & Chícharo, 2008) bahwa untuk dapat mendeskripsikan dengan baik suatu musim pada ekologi perairan dan siklus hidup spesies maka diperlukan pemisahan dalam interpretasi indeks asam nukleat dan turunannya. Sehingga dalam penelitian ini, tingginya nilai rasio RNA:DNA pada perlakuan MD dibarengi dengan nilai yang rendah pada berat, panjang, konsentrasi RNA. Ketika pakan buatan  diberikan  terlalu  cepat,  yang  dapat  mengakibatkan  defisit  nutrisi  selama  periode pemeliharaan  dari  hari  ke  sepuluh  sampai  hari  ke  tiga  puluh  lima  setelah  menetas,  stres fisiologis diasumsikan sebagai sumber konsentrasi DNA. Sel akan berusaha mempertahankan homeostasis sebagai jenis respons stres ini dengan terlibat dalam apoptosis, atau kematian sel yang disengaja (Kumar et al , 2015) , yang dapat menyebabkan penurunan jumlah DNA dalam  pengobatan  MD.  Konsentrasi  RNA  yang  lebih  tinggi  pada  perlakuan  MD  sangat berbeda  jika  dibandingkan  dengan  konsentrasi  DNA  yang  rendah.  Hal  ini  mengambarkan kondisi  sel  yang  masih  berusaha  mempertahankan  metabolisme  dalam  mempertahankan homeostasis  sel  meskipun  keadaan  kekurangan  nutrisi  akibat  pemberian  makanan  buatan juga.  dini,  yang  diduga  dapat  mencegah  perkembangan  organ  pencernaan  sejak  awal (Nguyen et al , 2011).
Temuan  (Hamza et  al ,  2007)  pada  ikan  pike  perch  lebih  lanjut  menunjukkan  bahwa  waktu penyapihan yang tidak tepat dapat menghambat perkembangan gastrointestinal atau merusak sel epitel, menurunkan daya cerna larva. Selain waktu penyapihan, metode penyapihan juga memiliki  pengaruh  terhadap  performa  pertumbuhan  ikan.  Metode  penyapihan  dengan memberikan pakan buatan secara mendadak ( sudden weaning ) menggantikan Artemia pada larva ikan manfish direkomendasikan oleh (Herath & Atapaththu, 2013) pada hari ke 14 setelah menetas. Hal ini dapat mengurangi ketergantungan pada Artemia yang cukup mahal harganya dan menurunkan biaya pembenihan.
Evaluasi selama 25 tahun terakhir terhadap perkembangan penyapihan menggunakan pakan buatan  tunggal  (bukan cofeeding )  pada  ikan  sebelah  di  Senegal  ( Solea  senegalensis ) menunjukkan bahwa waktu penyapihan mulai maju 2 bulan lebih awal sehingga mengurangi ketergantungan  pada  pakan  hidup  selama  tahap  larva.  Evolusi  ini  terjadi  tidak hanya  pada kinerja pertumbuhan larva dan sintasan, tetapi juga dalam hal kualitas benih yang dihasilkan. Keberhasilan ini dihasilkan dari meningkatnya pengetahuan dalam formulasi mikrodiet yang tepat dan teknologi produksi yang semakin canggih, serta peningkatan teknologi budidayanya sepanjang masa larva dan pasca larva  (Pinto et al ., 2018). Lebih lanjut (Pinto et al ., 2018) menyarankan penelitian di masa depan harus fokus pada peningkatan kesesuaian mikrodiet untuk fase pelagis  meliputi secara  karakteristik fisik,  daya  apung,  kecernaan serta larutnya nutrien  dalam  air  pada  ukuran  mikrodiet  yang  sangat  kecil.  Masih  pada  ikan  laut, (Mozanzadeh et  al. ,  2021)  menyampaikan  hasil  yang  berbeda  pada  penyapihan  ikan  Sirip Kuning  ( Yellow  fin  Seabream ) Acanthopagrus  latus .  Pada  penelitian  tersebut  penyapihan dengan komposisi 50% pakan hidup dan 50% mikrodiet tidak memiliki efek merugikan pada pertumbuhan,  kelangsungan  hidup  dan  aktivitas  enzim  pencernaan,  sementara  itu meningkatkan ketahanan terhadap stres larva A. latus . Dengan demikian, penerapan rezim pemberian makan bersama ( cofeeding ) dengan penggantian 50% pakan hidup dengan MD dapat  menghasilkan  kelangsungan  ekonomi  yang  lebih  besar  dari  pembenihan A.  Latus dengan  mengurangi  tenaga  kerja  dan  konsumsi  kista  Artemia.  (Mozanzadeh et  al .,  2021) menambahkan bahwa pada larva A. latus pertumbuhan, sintasan dan daya tahan terhadap
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 4 (2), 2022, 137-143
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
stres menurun pada penyapihan terlalu dini, penyapihan secara mendadak, penyapihan yang terlambat dan penyapihan menggunakan pakan tunggal (Rotifer/Artemia/mikrodiet saja).

## KESIMPULAN DAN SARAN
Pengaruh  pemberian  pakan  buatan  mikrodiet  pada  larva  ikan  Betok  ( A.  testudineus )  pada umur yang berbeda menunjukkan pertumbuhan yang tidak berbeda nyata pada umur 20 dan 25 hari setelah menetas berdasarkan nilai rasio DNA:RNA. Sedangkan yang diberi mikrodiet sejak awal memiliki rasio DNA:RNA tertinggi yang diduga menunjukkan kondisi stres fisiologi karena terhambatnya perkembangan saluran pencernaan.
Penerapan  penyapihan  pada  larva  ikan  Betok  ( A.  testudineus )  selanjutnya  perlu dikembangkan  formulasi  dan  teknologi  produksi  pakan  yang  sesuai  kebutuhan  larva  ikan betok, strategi penyapihan dengan metode cofeeding (gabungan pakan alami dan mikrodiet) pada umur larva antara 20 – 25 hari serta peningkatan teknologi budidayanya.

## DAFTAR PUSTAKA
Amornsakun, T., Sriwatana, W., & Promkaew, P. (2005). Some aspects in early life stage of climbing perch, Anabas testudineus larvae . 27 , 16.
Bunasir, Ilmi, A., Haryadi, A., Helmiansyah, Gunayan, & Sunarto. (2014). Perbaikan sistem pembesaran melalui pola pemberian pakan untuk meningkatkan produksi dan mengetahui dominasi sex ratio ikan papuyu (Anabas testudineus Bloch). Jurnal Papuyu BBAT Mandiangin , 2014 .
Caldarone, E. M., Clemmesen, C. M., Berdalet, E., Miller, T. J., Folkvord, A., Holt, G. J., Olivar, M. P., &  Suthers,  I.  M.  (2006).  Intercalibration  of  four  spectrofluorometric  protocols  for  measuring RNA/DNA ratios in larval and juvenile fish: Intercalibration of RNA/DNA protocols. Limnology and Oceanography: Methods , 4 (5), 153 – 163. https://doi.org/10.4319/lom.2006.4.153
Chícharo, M., & Chícharo, L. (2008). RNA:DNA ratio and other nucleic acid derived indices in marine ecology.
International Journal of Molecular Sciences , 9 (8), 1453 – 1471. https://doi.org/10.3390/ijms9081453
De Raedemaecker, F., Brophy, D., O’Connor, I., & O’Neill, B. (2012). Dependence of RNA:DNA ratios and  Fulton’s  K  condition  indices  on  environmental  character istics  of  plaice  and  dab  nursery grounds.
Estuarine, Coastal and Shelf Science , 98 , 60 – 70. https://doi.org/10.1016/j.ecss.2011.11.033
Froese, R. (2006). Cube law, condition factor and weight-length relationships: History, meta-analysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology , 22 (4), 241 – 253. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2006.00805.x
Hamza,  N.,  Mhetli,  M.,  &  Kestemont,  P.  (2007).  Effects  of  weaning  age  and  diets  on  ontogeny  of digestive  activities  and  structures  of  pikeperch  ( Sander  lucioperca )  larvae. Fish  Physiol Biochem , 13.
Herath,  S.  S.,  &  Atapaththu,  K.  S.  S.  (2013).  Sudden  weaning  of  angel  fish  pterophyllum  scalare (Lichtenstein) (Pisces; Cichlidae) larvae from brine shrimp (Artemia sp) nauplii to formulated larval feed. Springer Plus , 2 (1), 102. https://doi.org/10.1186/2193-1801-2-102
Kerambrun, E., Henry, F., Perrichon, P., Courcot, L., Meziane, T., Spilmont, N., & Amara, R. (2012). Growth  and  condition  indices  of  juvenile  turbot,  Scophthalmus  maximus,  exposed  to contaminated sediments: Effects of metallic and organic compounds. Aquatic Toxicology , 108 , 130 – 140. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2011.07.016
Kumar V., J. C. A. (2015). Robbins adn Cotran Phatologic Basis of Diseases (9 ed.). Laﬂamme,  S.,  &  Bernatch ez,  L.  (2012). RNADNA  ratios  in  American  glass  eels  (Anguilla  rostrata): Evidence for latitudinal variation in physiological status and constraints to oceanic migration? 10.
Morioka, S., Ito, S., Kitamura, S., & Vongvichith, B. (2009). Growth and morphological development of laboratory-reared  larval  and  juvenile  climbing  perch  Anabas  testudineus. Ichthyological Research , 56 (2), 162 – 171. https://doi.org/10.1007/s10228-008-0081-y
Buletin Jalanidhitah Sarva Jivitam, 4 (2), 2022, 137-143
Available online di: http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/JSJ/index
Mozanzadeh, M. T., Bahabadi, M. N., Morshedi, V., Azodi, M., Agh, N., & Gisbert, E. (2021). Weaning strategies affect larval performance in yellowfin seabream (Acanthopagrus latus). Aquaculture , 539 , 736673. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.736673 Nguyen, H. Q., Reinertsen, H., Wold, P.A., Tran, T. M., & Kjørsvik, E. (2011). Effects of early weaning strategies on growth, survival and digestive enzyme activities in cobia (Rachycentron canadum L.) larvae. Aquaculture International , 19 (1), 63 – 78. https://doi.org/10.1007/s10499-010-9341-8 Pinto, W., Engrola, S., & Conceição, L. E. C. (2018). Towards an early weaning in Senegalese sole: A historical review. Aquaculture , 496 , 1 – 9. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.06.077
Suzer, C., Kamaci, H. O., Coban, D., Saka, S., Firat, K., & Karacaoglan, A. (2011). Eary Weaning of seabass.
Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences , 11 (3). https://doi.org/10.4194/1303-2712-v11_3_22
Vasconcelos, R. P., Reis-Santos, P., Fonseca, V., Ruano, M., Tanner, S., Costa, M. J., & Cabral, H. N. (2009). Juvenile fish condition in estuarine nurseries along the Portuguese coast. Estuarine, Coastal and Shelf Science , 82 (1), 128 – 138. https://doi.org/10.1016/j.ecss.2009.01.002
Walther, B. D., Elsdon, T. S., & Gillanders, B. M. (2010). Interactive effects of food quality, temperature and rearing time on condition of juvenile black bream Acanthopagrus butcheri. Journal of Fish Biology , 76 (10), 2455 – 2468. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2010.02632.x Yulintine,  Harris  E.,  Jusadi  D,  Affandi  R.,  (2012).  Perkembangan  aktivitas  enzim  pada  saluran pencernaan  larva  ikan  betok  ( Anabas  testudineus Bloch). Bionatura-Jurnal  Ilmu  Hayati  dan Fisik , J4 No.1 , 59 – 67.
Zambonino-Infante,  J.,  Gisbert,  E.,  Sarasquete,  C.,  Navarro,  I.,  Gutiérrez,  J.,  &  Cahu,  C.  (2008). Ontogeny and physiology of the digestive system of marine fish larvae. Dalam B. Kapoor (Ed.), Feeding  and  Digestive  Functions  in  Fishes (hlm.  281 – 348).  Science  Publishers. https://doi.org/10.1201/b10749-8.