## POTENSI EKSTRAK DARI LIMBAH KULIT KAYU DAN BATANG MURBEI
(Morus alba var. kanva) SEBAGAI ANTIBAKTERI Enterococcus faecalis ATCC 29212
The Potency of Bark and Stem Waste of Murberry (Morus alba var. kanva) as Antibacteria of Enterococcus faecalis ATCC 29212

## Chandra Dyah Alifia, Yeni Mariani, Fathul Yusro
Fakultas Kehutanan Universitas Tanjungpura Jalan Imam Bonjol Pontianak 78124
Email: chandra.g1011151040@gmail.com
Abstract
There are several species of mulberry that grow and cultivated in Indonesia, and Morus alba var. kanva is one of it. The leaves of mulberry are used as silkworm feeds, while the bark and stem as waste are not utilized. This study aims to analyze the potency of bark and stem of mulberry as an antibacterial Enterococcus faecalis  (E. faecalis) which is a cause of the infection of teeth root canal.  The  bark  and  stem  of  mulberry  were  measured  it  water  contents  then  macerated  with ethanol  and  the  percentage  of  yield  extracts  were  determined.  Furthermore,  anti-bacterial activites were conducted with 5 level concentrations of bark and stem extract (25; 50; 75 and 100 mg / mL), ethanol and Tetracycline 250 mg as negative and positive control. The results showed that the bark had a moisture content of 10.7% with a yield value of 25.5%, while the stem had a moisture content of 9.4% and a yield value of 9.8%. the optimum concentration is at the level of 75 mg  / mL because  at  this  concentration  it has  been able  to  inhibit  the  inhibitory  zone  value which is no different from 100 mg / mL.
Keywords: Antibacterial tests, E. faecalis, Morus alba var. kanva, Stem, Bark
PENDAHULUAN Murbei adalah tanaman yang termasuk  ke  dalam  famili Moraceae dengan genus Morus sp (Ferlinahayati et al. 2012)  dan  berdasarkan  Permenhut No.P.35/MenhutII/2007  masuk  dalam katagori  hasil  hutan  bukan  kayu (HHBK). Beberapa jenis murbei tumbuh di  Indonesia,  diantaranya  adalah M. cathayana, M.  alba  ( var. kanva dan lembang),  M.  multicaulis,  M.  nigra,  M. australis dan M.  macroura. Keenam jenis murbei tersebut sudah dikembangkan dan dibudidayakan seiring  dengan  usaha  pemeliharaan  ulat sutera (Arisandi et al . 2006). Pembudidayaan murbei dilakukan untuk dimanfaatkan  daunnya  sebagai  pakan
dari  ulat  sutera  jenis Bombyx  mori L (Rahma et  al. 2017),  sedangkan  kulit kayu maupun batangnya hanya menjadi limbah  yang  tak  termanfaatkan  secara maksimal.
Selain  sebagai  pakan  ulat  sutera, beberapa penelitian menyebutkan bahwa murbei termasuk  sebagai  tanaman  yang memiliki fungsi dalam dunia permedisan yaitu  sebagai  tanaman  yang  berpotensi sebagai  obat  (Isnan  dan  Muin  2015). Sunanto  (2009)  dalam  penelitiannya menyebutkan bahwa kandungan metabolit  sekunder  pada  murbei  seperti alkaloida,  flavonoida,  dan  polifenol merupakan  golongan  senyawa  yang memiliki  sifat  sebagai  antioksidan. Selain  itu,  Aulifa et  al .  (2015)
menyebutkan  bahwa  murbei  dapat menghambat  pertumbuhan  bakteri  yang menjadi penyebab penyakit infeksi.
Infeksi pada manusia menyebabkan terganggunya  beberapa  fungsi  tubuh seperti  sistem  otak,  pencernaan,  dan beberapa  sistem  dari  organ  penting lainnya  dalam  tubuh  (Santoso et  al . 2012).  Penyakit  infeksi  yang  sering terjadi  disekitar  masyarakat  adalah infeksi  pada  saluran akar  gigi  (Zehnder dan  Belibasakis,  2015),  dimana  sekitar 80-90%-nya  disebabkan  oleh  bakteri Enterococcus faecalis (Pasril dan Yuliasanti  2014).  Usaha  penyembuhan penyakit oleh masyarakat yang
disebabkan  bakteri  selama  ini  adalah menggunakan antibiotik (Nurmala et al . 2015).  Penggunaan  antibiotik  secara terus  menerus  dengan  pemakaian  yang tidak  tepat  akan  mengakibatkan  bakteri menjadi  resisten  atau  kebal  terhadap antibiotik  (Utami,  2011).  Salah  satu usaha  untuk  mencegah  sifat  resistensi bakteri  pada  antibiotik  yaitu  dengan memanfaatkan  tanaman  yang  memiliki khasiat obat (Slipranata et al . 2016).
Beberapa penelitian terdahulu menyebutkan  bahwa  tumbuhan  murbei sudah  dimanfaatkan  masyarakat  untuk tanaman obat, meski demikian sejauh ini pemanfaatan  terhadap  murbei  masih berpusat pada bagian daun yang menjadi pakan  tunggal  dari  ulat  sutera  dan buahnya  yang  menjadi  bahan  pangan berupa selai. Hal tersebut yang menjadikan  perlunya  penelitian  lebih lanjut  mengenai  potensi  limbah  kulit kayu dan batang murbei dalam menghambat  pertumbuhan  bakteri E.
faecalis .  Penelitian  ini  bertujuan  untuk menganalisis  kadar  ekstrak  kulit  kayu dan  batang  murbei  serta  potensinya sebagai  antibakteri  alami  khususnya terhadap E. faecalis.

## METODE PENELITIAN
Penelitian ini dilaksanakan dibeberapa tempat yaitu Wood Workshop ,  Laboratorium  Teknologi Kayu  Fakultas  Kehutanan  Universitas Tanjungpura serta Laboratorium Mikrobiologi Unit Laboratorium Kesehatan  Provinsi  Kalimantan  Barat. Alat yang digunakan antara lain hammer mill , mesh  screen, s haker,  autoclave, mikroskop  digital,  mikropipet,  dan incubator. Beberapa bahan yang digunakan  antara  lain  batang  murbei yang peroleh dari bekas pakan ulat sutera di  pemeliharaan  ulat  sutera  Dramaga Bogor, bakteri E. faecalis ATCC 29212, etanol  96%,  Larutan Mc.  Farland 1, aquadest,  media Mueller  Hinton  Agar (MHA)  dan  antibiotik  Tetracycline  250 mg.

## Prosedur Penelitian

## Persiapan sampel
Batang murbei yang diambil adalah batang utama yang berdimeter ±3-5 cm. Batang  murbei  dibersihkan  dengan menggunakan  kuas.  Setelah  itu  dikuliti dan  dipisahkan  antara  kulit  dan  batang. Kulit  dan  batang  murbei  tersebut kemudian  dijemur  (Gambar  1),  setelah kering  dipotong  kecil  dan  di hammer mill hingga  terbentuk  serbuk  dan disaring  dengan  menggunakan  saringan mesh lolos  40  dan  tertahan  di  mesh  60 (Prihatiningtyas et al . 2018).
A

## B
Gambar  1.    Sampel  batang M.  alba var. kanva. (A).  Limbah  batang  murbei segar; (B). Proses pengeringan sampel (Stem of M. alba var. kanva (A) Green waste of Murberry waste; (B) Sample drying process)
Perhitungan kadar air (KA%)
Serbuk  kulit  dan  batang  di  ambil sebanyak  +2g  dan  diletakkan  pada alumunium  foil  yang  sudah  diketahui beratnya, kemudian di hitung kadar airnya dengan cara dilakukan pengovenan selama 24 jam pada suhu 103+2 o C (Priandi et al . 2019). Setelah di oven kemudian ditimbang.  Pengovenan  dilakukan  secara berulang hingga didapat berak konstan. Rumus Kadar Air:
KA= BA-BKT BKT X 100%
Keterangan : KA   = Kadar Air (%) BA   = Bobot Serbuk Awal (gram) BKT = Bobot Serbuk Kering Tanur (gram)

## Perhitungan kadar ekstrak.
Masing-masing serbuk (serbuk batang dan  serbuk  kulit)  ditimbang  1g  lalu  di simpan didalam erlenmeyer dan ditambahkan pelarut etanol dengan
perbandingan  1:20  untuk  proses  maserasi selama 24 jam di suhu kamar. Penghomogenan  menggunakan shaker dilakukan  agar  serbuk  dan  pelarut  dapat
terlarut dengan baik. Setelah itu penyaringan dilakukan dengan
menggunakan  kertas  saring.  Residu  yang tersaring  di  kertas  saring  dimasukkan kembali  ke  dalam  erlenmeyer  kemudian dimaserasi  kembali  seperti  proses  awal sampai didapat filtrat yang jernih Hasil dari penyaringan  tersebut  (filtrat)  disimpan  di cawan  porselen  yang  sebelumnya  sudah ditimbang  dan  dicatat  beratnya  kemudian dipanaskan  diatas waterbath dengan  suhu 60 o C  selama  24  jam  agar  sisa  pelarut teruapkan.  Rumus  perhitungan  kadar ekstrak (Rahmah, 2014):
% Kadar Ekstrak :
Berat ekstrak (g)
( 1-kadar air serbuk ) b erat serbuk (g) x 100%
Penyiapan  ekstrak  kulit  dan  batang (M.alba var. kanva) .
Sebanyak 200g masing masing serbuk batang dan kulit kayu murbei dimasukkan kedalam  botol  regen.  Kemudian  serbuk dilarutkan dengan 800 ml etanol
(perbandingan 1:4) untuk serbuk kulit dan
1000 ml untuk serbuk batang
(perbandingan  1:5),  dimana  perbandingan
tersebut  dilihat  berdasarkan  terendamnya serbuk  sampel  oleh  pelarut.  Selanjutnya kedua  larutan  dihomogenkan  hingga serbuk  terlarutkan  oleh  pelarut  yang digunakan.  Setelah  itu  disaring  dengan kertas  saring  meteran  dan  filtratnya dimasukan  kedalam  erlenmeyer  1000  ml. Residu  yang  didapat  diperlakukan  sama seperti  tahap  awal,  dimana  proses  ini dilakukan  sebanyak  4  kali  pengulangan hingga filtratnya agak jernih. Ekstrak pekat atau  mengkristal  didapatkan  dengan  cara memasukan filtrat yang sudah agak jernih ke  dalam  gelas  piala  dan  di  oven  dengan suhu 40 o C (Luliana et al . 2016).
Pembuatan media biakan bakteri (Mueller Hinton Agar).
Serbuk  MHA  ditimbang  sebanyak 38g,  larutkan  dengan  aquadest  sebanyak 1000  ml  dan  panaskan  menggunakan penangas air hingga homogen. Cawan petri disiapkan  dan  serbuk  MHA  yang  sudah diseduh menggunakan aquadest tersebut di sterilkan menggunakan autoklaf pada suhu 121 o C  (tekanan  1  atm;  ±15  menit).
Selanjutnya  larutan  MHA  yang  homogen dan steril dituangkan ke dalam cawan petri (Mardiah 2017).

## Pembuatan Larutan Mc. Farland 1
Larutan Mc.  Farland  1 terdiri  atas campuran BaCl 2 1,175 % dan H 2 SO 4 1 % sebanyak 9,9 mL (Kawengian et al . 2017).
Larutan  BaCl 2 dan  H 2 SO 4 dihomogenkan hingga  terbentuk  larutan  keruh  ( Mc. Farland 1)  dengan  konsentrasi  bakteri 300x10 6 CFU/ml (Dasopang 2017).

## Pembuatan biakan
Media  MHA  yang  telah  steril, sebanyak  6  mL  dimasukan  ke  dalam masing-masing  cawan  petri,  kemudian didiamkan  selama  3  menit  hingga  padat. Isolat bakteri diambil menggunakan jarum ose  steril  kemudian  dimasukkan  kedalam tabung  reaksi  dan  dihomogenkan  dengan larutan buffer. Suspensi bakteri disetarakan dengan standar kekeruhan Mc. Farland 1. Suspensi  bakteri  yang  sudah  disetarakan kekeruhannya kemudian dioleskan
mengunakan botton swab steril pada media MHA  yang  sudah  padat  (Sulistyani et  al . 2014).

## Uji Daya Hambat Pertumbuhan Mikrob.
Uji  daya  hambat  bakteri  dilakukan dengan  cara  difusi,  menggunakan  kertas cakram  berdiameter  6  mm  yang  telah ditetesi  20µl  ekstrak  etanol  kulit,  batang dan  kontrol.  Konsentrasi  ekstrak  yang digunakan  adalah  50,  25,  50,  75  dan  100 mg/ml,  serta  kontrol  negatif  yaitu  etanol 96%  dan  kontrol  positif  menggunakan antibiotik (Tetracycline 250 mg).
Kertas  cakram  yang  sudah  ditetesi ekstrak diletakkan pada media MHA yang sudah  tersuspensi  oleh  bakteri  dan diinkubasi  didalam  inkubator  pada  suhu 35 o C  selama  24  jam  (Sasmita  dan  Ling 2017).  Daya  hambat  diukur  dengan  cara menghitung  daerah  bening  (zona  bening) dengan menggunakan penggaris kemudian mengurangkan  hasil  dari  diameter  daerah bening  dengan  diameter  kertas  cakram. Nilai zona hambat diklasifikasikan berdasarkan  tabel  respons  hambatan pertumbuhan bakteri (Tabel 1).
Tabel 1. Klasifikasi respons hambatan pertumbuhan bakteri sebagai berikut (Anita et al . 2014):
Diameter Penghambatan (mm) Klasifikasi Respon Hambatan Pertumbuhan > 20 Sangat Kuat 11- 19 Kuat 5- 10 Sedang < 5 Lemah
Diameter  zona  hambat  yang  didapat kemudian  dilakukan  analisis  statistik menggunakan  faktorial  RAL  (rancangan acak  lengkap).  SPSS  24  digunakan  untuk membantu dalam proses analisis data.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Kadar Air (KA%) dan Kadar Ekstrak
Proses  ektraksi  kulit  dan  batang murbei ( M. alba var. kanva ) menggunakan pelarut etanol menghasilkan kadar ekstrak kulit  kayu  lebih  tinggi  dari  pada  batang. Besarnya kadar air (KA) serbuk dan kadar esktrak secara jelas terlihat pada Gambar 1.
Gambar 1. Kadar air (KA) serbuk dan kadar ekstrak kulit dan batang murbei ( Bark and Stem of Murberry Powder Moisture Contents and Yield Extracts ) Menurut klasifikasi komponen kimia kayu, ekstrak etanol dari kulit dan batang  murbei  memiliki  kadar  zat ekstraktif  tinggi karena rendemen ekstraknya  lebih  dari  4%  (Departemen Pertanian  1976).  Persentase  rendemen ekstrak  etanol  kulit  murbei  pada penelitian ini lebih tinggi jika dibandingkan dengan ekstrak etanol dari beberapa  kulit  tanaman  lain    seperti
Parkia  intermedia,  P.  speciosa,  P. timoriana, Dracontomelo dao, Mangifera pajang, M. foetida, Pentaspadon motleyi, Baccaurea costulata, B. angulata, Durio kutejensis dan D.  dulcis yang  mempunyai  ekstrak rendemen  2,05-21,48%  (Yusro et  al. 2016),  dan  dikatakan  lebih  rendah apabila  dibandingkan  dengan  ekstrak kulit  batang Cassia  fistula L.  (pohon
10,7 25,5 9,4 9,8 0 5 10 15 20 25 30 Kadar Air (KA) Serbuk Kadar Ekstrak P e r se n ( % ) Kulit Batang
trangguli) yang memiliki persen rendemen senilai 33,6% (Najihudin et al.
2017).  Sedangkan  pada  batang  murbei memiliki konsentrasi lebih tinggi apabila dibandingkan  dengan  beberapa  ekstrak etanol  batang  dari  beberapa  tumbuhan lain  seperti  pelanjau,  bakau  yang memiliki  persen  rendemen  4,34-7,14 (Yusro  2010)  dan  lebih  tinggi  jika dibandingkan  dengan  ekstrak  daun  dari tanaman Callicarpa longifolia, Myrmeconauclea strigosa, Eusideroxylon zwageri, Scoparia dulcis , Lagerstroemia  speciosa yang  memiliki persen rendemen 4,33-8,99% (Mariani et al. 2016) , tetapi  lebih  rendah  jika dibandingkan dengan ekstrak etanol dari batang pohon Acacia mangium yaitu 14- 18% (Lakmandaru 2018).
Kadar  ekstrak  pada  kulit  batang memiliki  persentase  yang  lebih  tinggi dibandingkan dengan batang. Hal tersebut  diakibatkan  oleh  stuktur  kimia pada  bagian  kulit  jauh  lebih  kompleks dibandingkan  dengan  bagian  kayu (Sjostrom  1998).  Menurut  Dia et  al . (2015) kulit batang lebih potensial untuk menjadi antioksidan dibandingkan organ tumbuhan  lainnya.  Metabolit  sekunder pada  setiap  tumbuhan  memiliki  cara yang  berbeda  dalam  berperan  sebagai agen  antibakteri  (Sudrajat et  al .  2012).
Perbedaan  nilai  kadar  ekstrak  kulit  dan batang  dengan  beberapa  tumbuhan  lain diduga  karena  setiap  tanaman  memiliki nilai kadar yang berbeda tergantung pada karakteristik  tanaman  tersebut  dan diduga  dipengaruhi  oleh  jenis  pelarut yang digunakan dalam proses pengekstrakkan.
Pada proses ekstraksi kali ini pelarut yang  dipilih  adalah menggunakan pelarut  etanol  96%.  Pelarut  etanol merupakan  bahan  kimia  yang  sering digunakan  karena  merupakan  senyawa organik  yang  tidak  berwarna,  memiliki titik  didih  yang  tinggi  selain  itu  juga mudah  menguap  (Arista  2013).    Proses pelarut  dalam  mengekstrak  senyawa metabolit sekunder terjadi karena pelarut meresap ke dalam dinding sel kemudian mengikat  zat  aktif  (metabolit  sekunder) yang ada didalamnya, dengan bercampurnya  pelarut  dan  zat  aktif tersebut menyebabkan terjadinya perbedaan  konsentrasi  antara  pelarut yang ada di luar dan didalam dinding sel sehingga  pelarut  dan  zat  aktif  yang tercampur  dalam  dinding  sel  tertekan dan  keluar  dari  dalam  dinding  sel. Senyawa  yang  dapat  terekstrak  oleh pelarut  etanol  diantaranya  terpenoid, alkaloid,  flavonol,  polifenol,  tanin, poliasetilen,  dan  sterol  (Heni et  al. 2015).
Uji  Aktivitas  Antibakteri  Pada  E. faecalis.
Pengujian  pada  bakteri E.  faecalis menggunakan  konsentrasi  ekstrak  kulit dan batang murbei sebesar 25; 50; 75 dan 100  mg/mL.  Kedua  ekstrak  dengan konsentrasi tersebut memberikan respon positif  terhadap  pertumbuhan  bakteri dengan  terbentuknya  zona  hambat disekitar cakram.
Kedua jenis ekstrak dan konsentrasi yang  digunakan  sebagai  perlakuan memberikan pengaruh yang sangat nyata pada  diameter  zona  hambat  yang dihasilkan. Terjadi interaksi antara jenis ekstrak  dan  level  konsentrasi  yang
digunakan dalam penghambatan bakteri E.  faecalis .  Ekstrak  kulit  dan  batang murbei dipengaruhi oleh level konsentrasi  yang  digunakan  dalam pengujian  bakteri,  sehingga  nilai  zona
hambat  yang  dihasilkan  memiliki  nilai yang  bervariasi.  Rerata  diameter  zona hambat  dan  hasil  uji  beda  nyata  jujur (BNJ) ditampilkan pada Gambar 2.
\ Keterangan :
a,b= jika huruf yang digunakan sebagai tanda berbeda, menunjukkan pengaruh berbeda sangat nyata atau signifikan  dengan  taraf  kepercayaan  99%.  (If  the letters  used  as  a  sign  is  different,  shows  a  very different or significantly different effects at 99% confidence level).
Berdasarkan  grafik  diatas  terlihat bahwa  kontrol  positif  dan  beberapa  level konsentrasi dari kulit dan batang memiliki zona  hambat  yang  berbeda,  sedangkan kontrol negatif tidak menunjukkan adanya zona hambat. Zona hambat yang dihasilkan dari ekstrak kulit dan batang murbei pada konsentrasi  25  dan  50  mg/mL  berbeda sangat  nyata.  Konsentrasi  50  dan  75 mg/mL pada ekstrak batang memiliki zona hambat  yang  berbeda  nyata,  tetapi  tidak berbeda  nyata  untuk  zona  hambat  dari ekstrak  kulit  batang.  Zona  hambat  pada
kedua  ekstrak  dengan  konsentrasi  75  dan 100  mg/mL  memiliki  zona  hambat  yang tidak  berbeda  nyata.  Secara  keseluruhan zona  hambat  yang  dihasilkan  dari konsentrasi yang digunakan berbeda nyata jika  dibandingkan  dengan  kontrol  positif (+)  dan  negatif (-), kecuali ekstrak  batang pada konsentrasi 25 mg/mL tidak berbeda dengan kontrol  negatif (-).  Diameter zona hambat yang dihasilkan sesuai dengan level konsentrasi,  dimana  semakin  meningkat level  konsentrasi  maka  diameter  hambat yang di hasilkan semakin besar.
a e a b c d a e bc bc d d 0 2 4 6 8 10 12 14 16 Kontrol negatif Kontrol positif 25 mg/mL 50 mg/mL 75 mg/mL 100 mg/mL Diam et er Z on a Ham b at ( m m ) Konsentrasi Batang Kulit
Gambar  2.  Rerata±SD  daya  hambat  ektrak  etanol  kulit  dan  batang  murbei  terhadap pertumbuhan E. faecalis (The Average of  inhibition zone of  bark and stem ethanol extracts against the growth of E. faecalis)
A B C
Gambar 3.    Diameter zona  bening pada media yang tersuspensi  bakteri E. faecalis (A) Kontrol Negatif dan Positif (B) Konsentrasi Ekstrak Batang murbei dan (C) Konsentrasi  ekstrak  kulit  batang  murbei  (25  ;  50  ;  75  dan  100  mg/mL). ( Diameter of clear zone on media bacterial suspensions of E. faecalis (A) Negative  and  positive  controls  and  (B)  Concentrations  of  murberry  stem extract (C) Concentrations of murberry bark extract
Pada  Gambar  3  dapat  dilihat  bahwa kontrol  negatif  (etanol)  tidak  dihasilkan zona bening pada pertumbuhan bakteri E. faecalis ,  hal  ini  menunjukkan  bahwa pelarut  tidak  berpengaruh  pada  ekstrak yang  digunakan  sehingga  daya  hambat yang didapat dari setiap konsentrasi ekstrak merupakan murni disebabkan oleh kandungan senyawa metabolit pada ekstrak tersebut  (Nugraha et  al. 2017).  Kontrol positif (tetracycline) memiliki zona hambat lebih  tinggi  dibandingkan  dengan  zona hambat  yang  dihasilkan  dari  ekstrak. Tertracycline  merupakan  antibiotik  yang mampu  bekerja  pada  dua  bakteri  utama yaitu bakteri gram negatif dan gram positif (Jawetz et  al .  2013).  Saat  tetracycline menyerap  melalui  membran  sitoplasma pada bakteri, tertracycline berubah menjadi bentuk ionik karena tetracycline tidak bisa terserap  melalui  membran  yang  menjadi penyebab  akumulasi  tertracycline  dalam sel, ionik tersebut menjadikan terhambatnya  proses  penguraian  protein pada  bakteri  sehingga  menyebabkan kematian pada sel bakteri (Pratiwi 2008).
Pada pengujian daya hambat antibakteri, diameter zona hambat tertinggi yang didapat dari kedua konsentrasi ekstrak adalah pada konsentrasi 100 mg/mL yaitu 4,17 dan 4,67, sedangkan konsentrasi yang terendah  pada  konsentrasi  ekstrak    25 mg/mL yaitu 0 dan 2,17 mm. Ekstrak kulit dan batang murbei memiliki diameter zona hambatan  yang  rendah  dibandingkan dengan  ekstrak  serai  yang  memiliki  zona hambat  6,1  mm  pada  konsentrasi  25% (Soraya et  al. 2016),  daun  srikaya  yang memiliki  zona  hambat  7,95  mm  pada konsentrasi 25% (Jangnga et al. 2018) dan bawang putih yang menghasilkan diameter hambatan  11  mm  pada  konsentrasi  25% (Soraya et al. 2018).
Hasil  klasifikasi  respon  hambatan pada  ekstrak  kulit  batang  dengan  level konsentrasi  100;  75;  50  dan  25  mg/mL termasuk  kedalam  kategori  lemah.  Pada ekstrak  batang  konsentrasi  25  mg/mL belum menghambat, dan mulai menghambat pada konsentrasi 50, 75 dan 100  mg/mL  dan termasuk  dalam  kategori lemah.
Nilai  zona  hambat  yang  dihasilkan
untuk ekstrak kulit lebih besar dibandingkan  dengan  ekstrak  batang. Perbedaan  persentase  zona  hambat  yang dihasilkan  oleh  kulit  dan  batang  diduga karena  kandungan  zat  ekstraktif  didalam kulit  kayu  memiliki  persentasi  yang  lebih besar  dari  pada  batang.  Zat  ekstraktif mempunyai  berbagai  fungsi  diantaranya sebagai perlindungan dari mikroorganisme yang dapat merusak kayu (Sjostrom, 1998). Senyawa  metabolit  sekunder  yang  berada pada masing-masing jenis ekstrak merupakan  pengaruh  utama  pada  proses penghambatan  pertumbuhan  bakteri E. faecalis . Metabolit sekunder memiliki cara
yang berbeda dalam menghambat pertumbuhan bakteri. Berdasarkan penelitian  Chan et  al. (2016)  disebutkan bahwa  kandungan  senyawa  kimia  dalam kulit  dan  batang  murbei  terdiri  atas senyawa  alkaloid,  flavonoid,  terpenoid, steroid, tanin dan polifenol.
Kemampuan alkaloid yang merupakan garam organik pada tumbuhan dalam  menghambat  pertumbuhan  bakteri adalah  dengan  mengganggu  lapisan peptidoglikan sehingga pembentukan dinding sel tumbuh tidak utuh dan menjadi penyebab kematian pada bagian sel bakteri (Munfaati et al . 2015). Flavonoid terbentuk atas  asam  amino  dan  lipid  yang  mampu berkolaborasi  dalam  gugus  alkohol  yang ada pada flavonoid yang merusak dinding sel  dan  senyawa  masuk  kedalam  inti  sel (Jawetz et  al .  1986).  Tanin  menyebabkan dinding sel menjadi berkerut dan mengganggu  pada  permeabilitas  sel sehingga  membuat  pertumbuhan  bakteri terganggu (Ajizah 2014). Polifenol menghambat  melalui  dinding  sel  dan
membran  sel,  komponen  bioaktif  dari polifenol  menyebabkan  lisis  sel  dan penguraian protein menyebabkan terganggunya  pembentukan  protein  pada sitoplasma  (Surjowardodjo et  al .  2015). Senyawa triterpenoid akan mempengaruhi porin  (protein  trans  membran)  pada membran  bagian  luar  dari  dinding  sel membentuk polimer yang saling mengikat kuat  satu  sama  lain  yang  kemudian merusaknya  bagian  porin  (Pratiwi  2008). Kerusakan pada bagian porin mengakibatkan permeabilits bakteri
tersebut  terganggu  sehingga  pertumbuhan bakteri terganggu atau bahkan mati, hal ini karena porin merupakan tempat terjadinya pertukaran  dan  buka  tutup  substasi  yang menunjang pada pertumbuhan bakteri.
Kemampuan ekstrak kulit dan batang dalam  menghambat  pertumbuhan  bakteri E. faecalis tergolong rendah. Hal ini diduga dipengaruhi  oleh  dinding  sel  bakteri E. faecalis terdiri  dari  40%  peptidoglokan, dimana bakteri ini pada awalnya diklasifikasi  sebagai Streptococcus  Group D , karena mereka memiliki antigen dinding sel Grup D juga mampu berkembang dalam kisaran pH tinggi (Putri et al . 2018).

## KESIMPULAN DAN SARAN
Kadar  ekstrak  yang  didapat  dari ekstrak etanol batang adalah 9,8% dan pada kulit  batang  25,5%.  Kedua  jenis  ekstrak yaitu  ekstrak  kulit  dan  batang  murbei memiliki aktivitas penghambatan
pertumbuhan bakteri E. faecalis.
Konsentrasi tertinggi pada ekstrak kulit dan batang  dalam  menghambat  pertumbuhan E. faecalis yaitu 100 mg/mL dengan zona hambat  4,17  mm  dan  4,67  mm,  dan termasuk dalam klasifikasi hambatan yang lemah,  sedangkan  konsentrasi  optimum
adalah  75  mg/mL  karena  di  konsentrasi tersebut  sudah  mampu  menghambat dengan  nilai  zona  hambat  yang  tidak berbeda  dengan  100  mg/mL.  Dengan diketahuinya  konsentrasi  yang  dapat menghambat  pertumbuhan  bakteri E. faecalis diharapkan  adanya  penelitian lanjutan mengenai kadar hambat minimum (KHM)  menggunakan  ekstrak  kulit  dan batang murbei ( M. alba var kanva ).

## DAFTAR PUSTAKA
Ajizah DN, Kumolowati E dan Faramayuda  F.  2014.  Penetapan Kadar  Flavonoid  Metode  AlCl  3 Pada Ekstrak Metanol Kulit Buah
Kakao  (  T heobroma  cacao L  .). Jurnal Ilmiah Farmasi. 2(2): 45-49.
Anita A, Khotimah S, Yanti AH.  2014.
Aktivitas Antibakteri Ekstrak Daun Benalu Jambu Air
( Dendropthoe pentandra L. Miq). J Protobiont.3(2): 268-272.
Arisandi, Yohana dan Andriani Y. 2006. Khasiat  Tanaman  Obat .  Jakarta. Pustaka Buku Murah.
Arista  M.  2013.  Aktivitas  Antioksidan
Ekstrak  Etanol  80%  Dan  96% Daun Katuk ( Sauropus androgynus L.  Merr.). Jurnal Ilmiah  Mahasiswa  Universitas Surabaya. 2(2): 1-16.
Aulifa DL, Febriani Y, Rendo MS. 2015. Aktivitas  Antibakteri  Ekstrak  n- Heksan,  Etil  Asetat,  dan  Etanol Morus  alba L.  terhadap  Bakteri
Penyebab Karies Gigi. Indonesian Journal of Pharmaceutical Science and Technology 4(2): 45- 53. Chan  EWC,  Lye  PY  dan  Wong  SK.
2016. Phytochemistry, pharmacology,  and  clinical  trials of Morus alba . Chines Of Journal Natural Medichines. 14(1): 17-30. Dasopang ES. 2017. Scrining Fitochemism And Test of Antibacterial  Activity  of  Extract Etanol  Leaf  Leaves  (Sambucus javanica Reinw) on Growth Bacteria  Eschericia  coli and Salmonella  thypi .  Biolink.  4(1): 55-62. Departemen Pertanian. 1976. Vademikum Kehutanan Indonesia .
Direktorat  Jendral  Kehutanan, Jakarta.
Dia  SPS,  Nurjanah  dan  Jacoeb  AM.
2015.  Komposisi  Kimia  Dan
Aktivitas Antioksidan Akar, Kulit Batang  Dan  Daun  Lindur.  JPHPI. 18 (2): 205–219. https://doi.org/10.17844/jphpi.201 5.18.2.205 Ferlinahayati, Hakim EH, Syah YM, dan
Juliawaty  LD.  2012.  Senyawa Morusin  dari  Tumbuhan  Murbei Hitam  ( Morus  nigra ).    Jurnal Penelitian Sains. 15(2): 70-73.
Heni, Arreneuz S dan Zaharah TA. 2015.
Efektifitas  Antibakteri  Ekstrak Kulit  Batang  Belimbing  Hutan ( Baccaurea angulata Merr.) Terhadap Staphylococcus  aureus
Dan Escherichia  coli .  JKK.  4(1):
84-90.
Isnan  W  dan  Muin  N.  2015.  Tanaman Murbei Sumber Daya Hutan Multi Manfaat. Info teknis eboni. 12(2) :
111-119. Jangnga ID, Kambaya PP dan Kosala K. 2018.  Uji  Aktivitas  Antibakteri Dan Analisis Bioautografi Kromatografis Lapis Tipis Ekstrak Etanol  Daun  Srikaya  ( Annona squamosa L).  Odonto  Dental Journal. 5(2): 102-109.
Jawetz M dan Adelberg. 2013. Medical Microbiology .  New  York.  Mc Graw Hill. Luliana S, Purwanti NU dan Manihuruk KN. 2016. Pengaruh Cara Pengeringan Simplisia Daun Senggani ( Melastoma malabathricum L.) Terhadap Aktivitas Antioksidan Menggunakan Metode DPPH (2,2- difenil-1-  pikrilhidrazil). Pharm Sci Res. 3(3): 120-129. Lukmandaru G. 2018. Komposisi Ekstraktif  pada  Kayu  Mangium ( Acacia  mangium ). Jurnal  Ilmu dan Teknologi Kayu Tropis 10(2): 150-158.
Najihudin A,  Chaerunisa  A  dan Subarnas  A.  2017.  Aktivitas Antioksidan  Ekstrak  dan  Fraksi Kulit    Batang  Trengguli  ( Cassia fistula  L )  dengan  Metode  DPPH . IJPST 4(2): 70-78. Mardiah. 2017. Uji Resistensi Staphylococcus  aureus Terhadap Antibiotik, Amoxillin, Tetracyclin dan  Propolis.  Jurnal  Ilmu  Alam dan Lingkungan. 8(16): 1-6. Mariani Y, Yusro F, Konishi Y, Taguchi
T  dan  Tominaga  A.  2016.
Regulatory effects of five medicinal  plants  used  by  Dayak Uud  Danum  in  West  Kalimantan Indonesia  on  the  delayed-  type hypersensitivity and the inflammation  of  human  colon epithelial  cells. Kuroshio  Science 10(1): 59–71. Munfaati PN, Ratnasari E dan Trimulyono  G.  2004.  Aktivitas Senyawa Antibakteri Ekstrak Herba Meniran ( Phyllanthus niruri )  Terhadap  Pertumbuhan Bakteri Shigella dysenteriae
Secara in Vitro.  LenteraBio. 4(1):
64-71. Nugraha AC, Prasetya AT dan Mursiti S. 2017.  Isolasi,  Identifikasi,  Uji Aktivitas Senyawa Flavonoid sebagai  Antibakteri  dari  Daun Mangga.  Indonesian  Journal  of Chemical Science. 6(2): 91-96. Nurmala  N,  Virgiandhy  I,  Andriani  A, dan Liana D. 2015. Resistensi dan Sensitivitas Bakteri Terhadap
Antibiotik  di  RSU  dr.  Soedarso Pontianak.  eJournal  Kedokteran
Indonesia. 3 (1): 21-29.
Pasril  Y,  dan  Yuliasanti  A.  2014.  Daya Antibakteri  Ekstrak  Daun  Sirih Merah  ( Piper  crocatum )  Terhadp
Bakteri Enterococcus faecalis Sebagai Bahan Medikamen Saluran  Akar  Dengan  Metode Difusi.  Insiva  Dental  J.  3  (1):  88- 96. Pratiwi SUT. 2008. Mikrobiologi Farmasi . Jakarta. Erlangga. Prihatiningtyas W, Mariani Y, Oramahi HA, Yusro F, Sisillia L. 2018. Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol  Kulit  Batang  Mangga Kweni  ( Mangifera  odorata  Griff ) Terhadap Escherichia  coli ATCC 25922 Dan Staphylococcus aureus ATCC 25923. Jurnal Tengkawang. 8(2): 59 – 74.
Priandi F, Yusro F,  Diba F,  Mariani Y,
Nurhaida.  2019.  Uji  Efektivitas Antibakteri  Ekstrak  Kulit  Batang Jambu Monyet ( Bellucia pentamera Naudin) Terhadap Pertumbuhan  Bakteri Eschericia coli dan Salmonella  typhi .  J. Tengkawang. 9 (1): 27-37.
Putri  YW,  Putra  AE  dan  Utama  BI. 2018. Identifikasi Dan Karakteristik Bakteri Asam Laktat Yang  Diisolasi  Dari  Vagina
Wanita Usia Subur. Jurnal Kesehatan Andalas, 7(3): 20-25. Rahmah,  FS.  2014.  Aktivitas  ekstrak etanolik daun bayam merah ( Amaranthus tricolor L.) terstandar  terhadap  kadar  LDL. Jurnal  Sains  Farmasi  &  Klinis.
3(2): 120-127.
Sasmita  AO  dan  Ling  APK.  2017. Bioactivity  of  Mesona  palustris (Black Cincau) as a Nutraceutical
Agent . Journal of Engineering and Science  Research.  1(2):  47–53. https://doi.org/10.26666/rmp.jesr. 2017.2.9
Sjostrum  E.  1998. Kimia  Kayu  Dan Dasar  –Dasar  Penggunaannya . Yogyakarta. Gajahmada University Press.
Soraya  C,  Chismirina  S  dan  Novita  R. 2018.  Pengaruh  Perasan  Bawang Putih (Allium sativum L.) Sebagai Bahan Irigasi Saluran Akar Dalam Menghambat Pertumbuhan Enterococcus  faecalis  Secara  In Vitro.  Cakradonya  Dent  J.  10(1): 1-9. Soraya C, Sunnati dan Maulina V. 2016. Efek  Antibakteri  Ekstrak  Batang Serai ( Cymbopogoncitratus ) Terhadap Pertumbuhan Entrococcus faecalis . Cakradonya Dent J. 8(2): 69-78.
Sudrajat,  Sadani,  &  Sudiastuti.  (2012).
Analisis Fitokimi Senyawa Metabolit Sekunder Ekstrak Kasar Etanol  Daun  Meranti  Merah  ( Shorea  leprosula  Miq.)  Dan  Sifat Antibakterinya Terhadap Staphylococcus aureus Dan Eschericia  coli . J.Trop  Pharm , 1 (4), 303–311
Sulistyani  N  dan  Akbar  AN.  2014. Aktivitas Isolat Actinomycetes dari
Rumput Laut ( Eucheuma cottonii ) sebagai Penghasil Antibiotik terhadap Staphylococcus  aureus dan Escherichia  coli. Jurnal  Ilmu Keparmasian Indonesia. 12(1):1-9.
Santoso  JS,  Anwariah  RO,  Rumiantin AP,  Putri  N,  Ukhty  and  Yoshie
SY.  2012. Phenol  Content. Antioxidan  Activity  and  Fibers profile of Four Tropical Seagrasses from Indonesia .
Journal of Medical Plants 10(37):
73-79.
Slipranata M, Lestari FB, Sandi NA, dan Salasia SIO. 2016. Potensi Ekstrak Daun  Sage  (Salvia  officinalis .  L) Sebagai  Anti-Streptococcus  suis Penyebab  Zoonotik  Meningitis .  J. Saint Veteriner. 34 (2): 198-202.
Sunanto H. 2009. 100 Resep Sembuhkan Hipertensi,  Obesitas  dan  Asam Urat . Jakarta. PT. Gramedia.
Surjowardojo  P,  Susilorini  TE  dan
Panjaitan AA. 2015. Daya Hambat Jus  Kulit  Apel  Manalagi  ( Malus sylvestris Mill.) Terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus Dan Escherichia coli Penyebab Mastitis  Pada  Sapi  Perah.  Jurnl Ternal Tropikal. 16(2): 30-39.
Utami ER. 2011. Antibiotika, Resistensi dan  Rasionalitas  Terapi .  El- Hayah. 1 (4): 191-198.
Zehnder  M,  dan  Belibasakis  GN.  2015. On  the  Dynamics  of  Root  Canal Infections-What  We  Understand and What We Don’t . Virulence. 6
(3): 216-222.
Yusro F, Ohtani K dan Kubota S. 2016. Inhibition  of  α-Glucosidase  by Methanol  Extracts  from  Wood Bark of Anacardiaceae , Fabaceae ,  Malvaceae  and  Phyllanthaceae
Plants Family in West Kalimantan
, Indonesia . Kuroshio science 9(2): 108-122.
Yusro F, Syafii W dan Pribadi ES. 2010. Sifat Anti Cendawan Trichophyton mentagrophytes dan Candida albicans dari  Zat  Ekstraktif  Kayu Pelanjau  (Pentaspadon  motleyi).
Jurnal  Ilmu  Kehutanan 4(2):  57- 69.