e-issn: 2716-4608 p-issn: 2655-366X
HEMATOLOGIC ANALYSIS OF TILAPIA ( Oreochromis niloticus ) ON

## ECTOPARASITE INFECTION OF THE FLOATING NET CAGES IN RAWA PENING
Ninik Ambarwati 1* ,  Sri Hidayati 1 , Tholibah Mujtahidah 1
1 Aquaculture Study Program, Faculty of Agriculture, Tidar University Jl. Kapten Suparman No.39, Tuguran, Potrobangsan, Kec. Magelang Utara, Kota Magelang, Jawa Tengah 56116
* nikambarwati123@gmail.com

## ABSTRACT
Hematologic analysis of plasma proteins by testing for hemoglobin, erythrocytes, and leukocytes  against  ectoparasite  infection in  cages  was  carried  out  by  taking  samples  of  fish with  consumption  sizes  of  15-20  cm.  The  aim  of  this  study  was  to  find  out  the  amount  of exposure to ectoparasites internally in the body of tilapia based on blood protein hematology test. Analysis of the data used is analysis of variance (ANOVA) with the aim of knowing the effect  of  sampling  and  the  parameters  tested.  The  results  showed  that  the  presence  of infection identified normal hemoglobin levels of 7.438 g/dL, erythrocytes  were quite low at 1.5605  x10 12 /L,  this  is  the  nutritional  factor  given  to  tilapia  and  leukocytes  were  still  in normal  condition,  namely  61.985x10 9 /L.  The  ectoparasites  found  were Streptococcus sp, Lernea sp, Aeromonas sp,  and Trichodina sp.  The  effect  of  the  value  of  plasma  protein content in blood for hemoglobin and leukocytes is still in normal condition, but erythrocytes are  below  the  normal  point  so  that  from  internal  factors  of  tilapia  disease,  hematological blood  plasma  protein  affects  tilapia  disease,  especially  on  erythrocyte  variables  that  affect fish anemia to mass death. This is in accordance with the situation in the field where tilapia in the  KJA  (Floating  Net  Cage)  experienced  sudden  and  mass  death  in  a  short  period  of  time even though previously routine controls had been carried out by cage cultivators. When fish experience stress, fish blood glucose levels will increase while fish blood plasma total protein levels decrease.
Keywords: Hematologic, Ectoparasite, Tilapia

## I. PENDAHULUAN
Bagian  seluler  dan  plasma  yang memiliki gumpalan darah dan cairan serum, dimana komposisinya  sama dengan plasma tetapi  tidak  sama  dengan  fibrinogen  dan beberapa  platelet  yang  tidak  ada.  Tekanan osmotik  darah  lebih  banyak  didapat  dari keberadaan  asam  amino  bebas  daripada protein,  gumpalan  darah  (fibrinogen  dan hemoglobin)  memiliki  fungsi  sebagai penyedia  sumber  nutrien,  mengikat,  dan transfer  nutrien,  sebagai  tekanan  osmotik
untuk  kerja  kapiler,  serta  sebagai  mekanis perlindungan  immunologis.  Warna  darah menentukan  kandungan  protein  darah. Darah  terdiri  dari  komponen  cair  yang disebut  plasma  dan  berbagai  unsur  yang dibawa  dalam  plasma  yaitu  sel-sel  darah. Sel-sel  darah  terdiri  dari  eritrosit  atau  sel darah  merah,  leukosit,  eritrosit,  dan hemoglobin  yaitu  sel  yang  mengangkut oksigen, leukosit atau sel darah putih yaitu sel  yang  berperan  dalam  kekebalan  dan pertahanan  tubuh  dan  trombosit  yaitu  sel
yang berperan dalam homeostasis. Sel - sel dan  fragmen  -  fragmen  sel  yang  terdapat secara  bebas  dalam  medium  yang  bersifat cair dalam darah disebut plasma darah. Sel -  sel  dari  fragmen  sel  merupakan  unsur darah  yang  disebut  unsur  jadi.  Plasma darah  adalah  cairan  kompleks  yang mengandung  ion-ion  dan  molekul  organik serta  berada  dalam  keadaan  keseimbangan dinamik  dengan  cairan  tubuh  lain.  Plasma mengandung  90%  air,  7-8%  protein,  1% elektrolit dan 1-2% zat-zat terlarut lainnya. Pengamatan hematologi pada ikan merupakan  mekanisme  laboratoris  untuk mengetahui  komponen  darah  normal  dan abnormalitas  yang  terjadi  pada  struktur darah,  seperti  hematokrit,  hemoglobin, leukosit  dan  faktor  lain  yang  disebabkan oleh  perubahan  lingkungan  atau  serangan parasit.
Pemeriksaan darah ( hematologic ) pada ikan dapat digunakan sebagai indikator  dari  kualitas  air  dan  lingkungan yang  kurang  baik  sehingga  dapat  memicu berkembangnya penyakit ikan[1]. Penyebab penyakit sebagai indikator terjadinya infeksi pada ikan adalah adanya perubahan pada  gambaran  darah.  Ikan  yang  terinfeksi akan mengalami perubahan pada konsentrasi  hemoglobin,  jumlah  leukosit total  dan  jumlah  eritrosit  [2].  Trombosit berperan  penting  dalam  proses  pembekuan darah. Keadaan pada protein darah memiliki  peran  pada  sistem  pada  kinerja dan  sistem  osmoregulasi  pada  ikan. Ektoparasit  merupakan  organisme  yang dapat  menyebabkan  kematian  pada  ikan. Perkembangbiakan  parasit  dapat  terjadi pada  lokasi  budidaya,  jika  lokasi  tersebut kurang perawatannya, pakan yang berlebihan,  perubahan  lingkungan  yang dapat  menurunkan  resistensi  ikan  tersebut. Parasit  yang  menyerang  ikan  budidaya akan  mempengaruhi  kelangsungan  hidup seperti terhambatnya pertumbuhan ikan [3- 4].
Pengaruh yang muncul diawali dengan  terganggunya  sistem  metabolisme
tubuh  hospes  sampai  merusak  organ (seperti  insang,  lambung  dan  usus), sehingga dapat mempengaruhi
pertumbuhan ikan, bahkan dapat menyebabkan kematian. Daur hidup parasit yang  menginfeksi  ikan  budidaya  dapat diketahui  melalui  hubungan  antara  hospes yaitu ikan budidaya, parasit serta lingkungan hospes tersebut hidup, sehingga para pembudidaya ikan dapat mengantisipasi keadaan yang timbul akibat parasit  tersebut.  Infeksi  parasit  menjadi salah  satu  faktor predisposisi bagi  infeksi organisme patogen.
Penggunaannya mampu bertindak sebagai upaya pencegahan  dari  infeksi  bakteri  patogen yang  lebih  berbahaya,  kerugian nonlethal yang  dapat  merusak  organ  luar  [2] , seperti pertumbuhan  yang  lambat,  nilai  jual,  dan peningkatan  sensitivitas  terhadap stressor. Tingkat  infeksi  parasit  yang  tinggi  dapat mengakibatkan kematian akut yaitu mortalitas tanpa menunjukkan gejala terlebih  dahulu  [5].  Mortalitas  yang  tinggi dapat  terjadi  akibat  infeksi  parasit  dari dampak  yang  dihasilkan.  Penyakit  yang timbul  dalam  proses  budidaya  disebabkan karena  interaksi  antara  ikan,  lingkungan dan parasit tidak berada dalam keseimbangan.  Pemeriksaan  darah  ikan dapat  meliputi  jumlah  eritrosit  (sel  darah merah),  jumlah  leukosit  (sel  darah  putih), konsentrasi  hemoglobin,  nilai  hematokrit dan jumlah micronuclei.

## 2. METODE PENELITIAN Waktu dan Tempat
Penelitian  dilaksanakan  pada  27 September  hingga  22  Oktober  2021  di Laboratorium  Kesehatan  Hewan  Dinas Peternakan dan Kesehatan Hewan (LKHDPKH) Kota Semarang dan
Laboratorium  Pengujian  Kesehatan  Ikan dan Lingkungan (LPKIL) Ambarawa.

## Metode Penelitian
Penelitian  ini  menggunakan  metode eksperimen dan purposive sampling.
Pengolahan  data  secara  survei  deskriptif. Pengujian  untuk hematology plasma  darah ikan.  Data  yang  dianalisa  secara  deskriptif meliputi  data  prevalensi,  profil  darah  ikan. Pengamatan  ektoparasit  3  kali  dengan pengamatan  sampel  secara  langsung  di laboratorium.

## Prosedur Penelitian
Pengambilan Darah Pengambilan darah dengan
menggunakan syringe 1  mL  pada  bagian bawah  insang  ikan  nila  tepat  pada pembuluh  darah  dengan  satu  kali  tarikan dan  dimasukkan  dalam  tabung  ETDA untuk diujikan.

## Pengujian  Kandungan  Protein  Darah Ikan Nila
Darah  yang  ada  didalam  tabung EDTA  ungu  dikocok  terlebih  dahulu,  lalu diambil  sampel  sebanyak  10  mL  dan dimasukkan  ke  dalam  tabung  yang  diuji menggunakan fully-auto hematology analyzer .  Tabung  EDTA  yang  digunakan tutup  ungu  untuk  pengujian hematology karena  darah  yang  diuji  dalam  bentuk  cair bukan  gel,  sehingga  dalam  pengujian  ini menggunakan  tabung  EDTA  tutup  ungu. Sampel  akan  dimasukkan  kedalam  alat fully-auto hematology analyser dan hasilnya akan keluar dalam bentuk angka.
Pengujian Ektoparasit Ikan Nila ( O. niloticus )
Pengujian  ektoparasit  dengan  sampel pada  bagian  sisik,  insang,  dan  lendir  ekor. Ikan nila ( O. niloticus ) akan dibuat preparat basah  dengan  kaca  objek  yang  ditetesi sedikit akuades kemudian diujikan menggunakan  mikroskop  dengan  skala perbesaran  40x  dengan  3  kali  pengulangan untuk  memaksimalkan  pengamatan  dan mengidentifikasi  dengan  buku  panduan yang  ada  di  LPKIL  Ambarawa  sebagai patokan gambaran bakteri yang menjangkit ikan nila.

## Analisis Data
Pengambilan  data  Uji  ANOVA  satu arah  ( One  Way ANOVA)  analisis  beda antar  pengukuran  dan  pengujian  variabel dengan  hipotesis  yang  digunakan  yaitu  Ho adalah beda antar pengujian tidak signifikan,  Ha  beda  pengujian  signifikan. Apabila  F  hitung  <  F  table  5%,  maka terima  Ho  pengujian  beda  variabel  tidak signifikan  dimana  pengaruh hematologic terhadap  paparan  ektoparasit  ikan  nila ( O. niloticus ). Hasil kapasitas osmoregulasi dianalisis menggunakan ANOVA satu arah dengan  taraf  kesalahan  α  =  0,05  dan  0,01. Bila  lebih  dari  0,005  berarti  tidak bermakna. Untuk tingkat kepercayaan 99% bila  angkanya  kurang  dari  atau  sama dengan 0,001 berarti bermakna.

## 3.  HASIL DAN PEMBAHASAN Kadar Hemoglobin
Kadar  hemoglobin  yang  ada  pada  ke 5  lokasi  tergolong  normal  yaitu  Tuntang sebesar 6,64 g/dL, Saloka sebesar 8,7 g/dL, Kampung  Rawa  sebesar  7,125  g/dL, Bejalen sebesar 7,575 g/dL, dan Banyubiru sebesar 7,15 g/dL (Gambar 1). Berdasarkan pengujian  menggunakan  SPSS  ( Statistical Product  and  Service  Solutions )  pada analisis hasil uji Duncan dan Anova dengan α  =  0,05    pada  kawasan  Tuntang  6.6500 g/dL ± 0.922, kawasan Saloka 8.7000 g/dL ±  0.922,  kawasan  Kampung  Rawa  7.1250 g/dL ± 0.922, kawasan Bejalen 7.5750 g/dL ±  0.922,  dan  kawasan  Banyubiru  7.1500 g/dL ± 0.922.
Hasil  pengujian  hemoglobin  dari  5 titik  pengambilan  sampel  diperoleh  rata- rata  besaran  hemoglobin  di  Rawa  Pening sebesar 7,438 g/dL, sehingga pada budidaya  ikan  nila  ( O.  niloticus )  di  Rawa Pening  tergolong  normal.    Menurut  [6] kadar  hemoglobin  normal  pada  ikan  nila ( O. niloticus ) berkisar 5,05-8,33g%.
Rendahnya  kadar  hemoglobin  berdampak pada  jumlah  oksigen  yang  rendah  pula didalam  darah.  Banyak  faktor  yang mempengaruhi
rendahnya kadar
haemoglobin,  kadar  haemoglobin  dibawah kisaran normal mengindikasikan rendahnya kandungan protein pakan, defisiensi
vitamin  dan  kualitas  air  buruk  atau  ikan mendapat infeksi.
Gambar 1. Pengujian Kadar Hemoglobin Ikan Nila ( O. niloticus ) di Keramba
Gambar 2. Pengujian Kadar Eritrosit Ikan Nila ( O. niloticus ) di Keramba
Kadar Eritrosit
Nilai eritrosit hasil pengujian Tuntang  yaitu  sebesar  1,5525  x10 12 /L, Saloka  sebesar  1,79  x10 12 /L,  Kampung Rawa  sebesar  1,5375  x10 12 /L,  Bejalen sebesar  1,7725  x10 12 /L,  dan  Banyubiru sebesar 1,15x10 12 /L dengan rata-rata tingkat  eritrosit  ikan  nila  ( O.  niloticus )  di rawa  pening  sebesar  1,5605  x10 12 /L (Gambar 2). Berdasarkan pengujian
menggunakan  SPSS  ( Statistical  Product and  Service  Solutions )  pada  analisis  hasil uji  Duncan  dan  Anova  dengan  α  =  0,05 pada kawasan Tuntang 101.0475 x10 12 /L ± 0.085,  kawasan  Saloka  1.7900  x10 12 /L  ±
0.085,  kawasan  Kampung  Rawa  1.5375 x10 12 /L  ±  0.085,  kawasan  Bejalen  1.7725 x10 12 /L ±0.085, kawasan Banyubiru 1.1500 x10 12 /L  ±  0.085.  Menurut  [7]  jumlah eritrosit normal pada ikan nila ( O.  niloticus )  berkisar  antara  2  x10 12 /L  - 3x10 12 /L.  Faktor  yang  mempengaruhi  nilai eritrosit  akibat  keadaan  lingkungan  nutrisi dan  genetika  dari  ikan  nila  [8].  ikan terpapar, terjadi peningkatan bukaan operkulum  ikan.  Hal  ini  menandakan  ikan mulai  mengalami  gangguan  pernapasan, respon  stres  pada  ikan  akibat  metabolisme dalam  tubuh  ikan  meningkat  dan  ikan berusaha mengatasi perubahan yang terjadi
6.64 8.7 7.125 7.575 7.15 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Tuntang Saloka Kampung Rawa Bejalen Banyu Biru K ad ar Hem ogl ob in ( g/d L ) Lokasi Pengambilan Sampel 1.5525 1.79 1.5375 1.7725 1.15 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 1.4 1.6 1.8 2 Tuntang Saloka Kampung Rawa Bejalen Banyubiru K ad ar E rit ros it ( .. .x 10 12 /L ) Lokasi Pengambilan Sampel
e-issn: 2716-4608 p-issn: 2655-366X pada jaringan tubuh sehingga
membutuhkan  oksigen  lebih  tinggi  dari kondisi normal.
Kadar Leukosit Nilai lokasi Tuntang sebesar 49,9x10 9 /L,  nilai  lokasi  Saloka  sebesar 47,5x10 9 /L,  nilai  lokasi    Kampung  Rawa sebesar  58,1x10 9 /L,  nilai  lokasi  Bejalen sebesar 83,45x10 9 /L, nilai lokasi Banyubiru sebesar 66,475x10 9 /L dengan nilai rata-rata leukosit  di  budidaya  Rawa  Pening  sebesar 61,985x10 9 /L.  Menurut [9] jumlah leukosit normal  pada  ikan  nila  ( O.  niloticus ) berkisar  antara  20  x10 9 /L  -150x10 9 /L.
Berdasarkan pengujian menggunakan SPSS pada  analisis  hasil  uji  Duncan  dan  Anova dengan  α  =  0,05    pada  kawasan  Tuntang 24.9500x10 9 /L  ±  0.515,  kawasan  Saloka 23.7500x10 9 /L ± 0.515, kawasan Kampung Rawa  38.5750x10 9 /L  ±  0.515,  kawasan Bejalen  41.7250  x10 9 /L  ±  0.515,  kawasan Banyubiru  66.5000  x10 9 /L  ±  0.515.  Faktor yang  mempengaruhi  leukosit  antara  lain jenis,  spesies,  umur,  dan  aktivitas  otot  [1]. Ikan yang sakit dapat menghasilkan banyak leukosit  untuk  memfagosit  bakteri  dan mensintesa  antibodi,  stress  ikan  biasanya adanya perubahan lingkungan yang memicu  kadar  glukosa  darah  meningkat.
Gambar 3. Pengujian Kadar Leukosit Ikan Nila ( O. niloticus ) di Keramba

## Analisis Ektoparasit
Hasil  pengamatan  ditemukan  parasit Streptococcuss sp. Aeromonas sp.  dan Trichodina sp.  masing-masing  1paparan setiap  tempat  serta Lernea sp.  sebanyak  2 paparan di kawasan Tuntang. Pada minggu ke  dua  ditemukan  parasit Lernea sp.  dan Trichodina sp. masing-masing 1 paparan di kawasan  Saloka.  Pada  minggu  ke  tiga ditemukan  parasit Streptococcus sp.  dan Aeromonas sp. masing-masing 1 paparan di kawasan Bejalen dan Kampung Rawa. Pada minggu ke empat ditemukan parasit Lernea sp.,  dan Aeromonas sp.  masing-masing  1 paparan,  serta Trichodina sp.  sebanyak  2 paparan  di  kawasan  Banyubiru.  Hasil pengamatan dapat diketahui adanya paparan bakteri yang menyebabkan
penyakit  yaitu  ditandai  pada  gejala-gejala ikan  nila  seperti  kehilangan  nafsu  makan, luka-luka pada permukaan tubuh, pendarahan  pada  insang,  sisik  mengelupas, sirip ekor rusak, serta muncul bintik merah dan jamur pada morfologi ikan nila. hal ini sesuai  dengan  [10]  menyatakan  bahwa gejala  klinis  ikan  yang  terserang  penyakit ditandai dengan adanya pendarahan ( hemoragi )  dan  terdapatnya  luka  pada tubuh ikan ( ulcer ), pergerakan ikan menjadi pasif dan nafsu makan menurun.
Pengaruh Protein Plasma
Darah terhadap Penyakit Ikan Nila
Berdasarkan  data  yang  diperoleh dengan  melakukan  perbandingan  data  dan analisis  secara  deskriptif  diperoleh  nilai
49.9 47.5 58.1 83.45 66.475 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 Tuntang Saloka Kampung Rawa Bejalen Banyubiru K ad ar L eu k os it ( x 10 9 /L ) Lokasi Pengambilan Sampel
dari  protein  darah  dari  rata-rata  variabel hemoglobin  sebesar  7,438  g/dL,  eritrosit sebesar  1,5605  x10 12 /L,  dan  leukosit sebesar  61,985x10 9 /L  dari  hasil  analisis jumlah  paparan  bakteri  yang  menjangkit ikan  nila  meliputi Streptococcus sp., Lernaea sp., Aeromonas sp., dan Trichodina sp.. Pengaruh dari nilai kandungan  plasma  protein  darah  untuk hemoglobin  dan  leukosit  masih  dalam keadaan  normal,  namun  eritrosit  berada dibawah  titik  normal  sehingga  dari  faktor internal  penyakit  ikan  nila  protein  plasma darah hematologic berpengaruh  terhadap penyakit  ikan  nila  terutama  pada  variabel eritrosit  yang  mempengaruhi  ikan  anemia hingga  kematian  masal  hal  ini  sesuai dengan  keadaan  di  lapangan  dimana  ikan nila di KJA mengalami kematian mendadak dan masal dalam kurun waktu yang singkat meskipun  sebelumnya  telah  dilakukan
kontrol  rutin  oleh  pembudidaya  keramba. Pada  saat  ikan  mengalami  stres  kadar glukosa  darah  ikan  akan  meningkat sedangkan kadar total protein plasma darah ikan menurun. Sementara peningkatan total protein plasma merupakan respon terjadinya  infeksi  atau  respon  pemberian stimulant  dan  vaksin.  Total  protein  pada ikan  yang  sehat  biasanya  berkisar  antara 30-50 mg/mL plasma [11].

## 4. KESIMPULAN DAN SARAN
Hasil  pengujian  dan  pengamatan pengaruh hematologic memiliki  pengaruh terhadap  penyakit  ikan  nila  hal  ini berdasarkan  nilai  variabel  protein  plasma darah  eritrosit  terendah  dan  leukosit tertinggi  dan  KJA  terbaik  pada  kontruksi KJAD  dengan  paparan  penyakit  paling rendah  dibandingkan  keramba  lainnya.

## DAFTAR PUSTAKA
1. Azhari., Handayani., dan Nurhayati.(2020). Pengaruh Penambahan Arang Aktif Tulang Ikan Pada Pakan Terhadap Gambaran Darah Ikan Nila ( Oreochromis niloticus ) . Jurnal Perikanan dan Perairan , 1(2)
2. Rahma,  F.W.,  G.  Mahasri,  dan  L.  Surmatiwi.  (2015).  Pengaruh  Pemberian  Ekstrak Sargassum  sp.  dengan  Pelarut  Metanol  pada  Pakan  Terhadap  Jumlah  Eritrosit  dan Differensial Leukosit Ikan Lele Dumbo ( Clarias gariepinus ). Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan , 7(2): 213– 218. http://dx.doi.org/10.20473/jipk.v7i2.11209
3. Pujiastuti,  N.  (2015). Identifikasi  dan  Prevalensi  Ektoparasit  pada  Ikan  Konsumsi  di Balai  Benih  Ikan  Siwarak. Fakultas  Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam Universitas Negeri Semarang.
4. Putra,  E.M.,  G.  Mahasri,  dan  L.A.  Sari.  (2017).  Infestasi  Ektoparasit  pada  Ikan  Nila ( Oreochromis niloticus ) yang Dipelihara dengan Menggunakan Sistem Akuaponik dan Tanpa Akuaponik. Journal of Aquaculture and Fish Health , 7(1): 42-49
5. Rahmi,  R.,  K.  Nisaa,  Akmal,  Mardiana,  A.  Chadijah,  dan  N.I.  Salam.  (2021). Peningkatan  Ketahanan  Benih  Ikan  Nila  Salin (Oreochromis  niloticus) terhadap Penyakit Streptococcosis Melalui  Vaksinasi  Induk. Jurnal  Perikanan, 23(1):31-36. https://doi.org/10.22146/jfs.60280
6. Ivanarji,  S.  (2021). Pengaruh  Pemuasaan  Terhadap  Profil  Darah  Ikan  Nila  Sultana (Oreochromis spp ). Universitas Jenderal Soedirman.
7. Hartika,  R.,  Mustahal,  dan  A.N.  Putra.  (2014).  Gambaran  Darah  Ikan  Nila ( Oreochromis  niloticus )  dengan  Penambahan  Dosis  Prebiotik  yang  Berbeda  dalam Pakan. Jurnal Perikanan dan Kelautan , 4(4): 259-267
8. Yanto, H, Hasan, dan H., Sunarto. (2015). Studi Hematologi untuk Diagnosa Penyakit Ikan  Secara  Dini  di  Sentra  Produksi  Budidaya  Ikan  Air  tawar  Sungai  Kapuas  Kota Pontianak. Jurnal Aquatika , 6(2):11-20
9. Sasongko,  A.  (2001).  Biomass  of  Nitrifying  Bacteria  on  Various  Filter  Materials  in Closed Flow Recirculation Systems and Their Effect on Fish Conditions: Blood Picture
10. Nafiqoh,  N.,  S.  Andriyanto,  H.  Novita,  D.  Sugiani,  dan  Taukhid.  (2021).  Kombinasi Sirih  dan  Kipahit  sebagai  Imunostimulan  terhadap  Penyakit Streptococcosis sp  pada Ikan  Nila  ( Oreochromis  niloticus ). Badan  Riset  dan  Sumberdaya  Manusia  Kelautan dan Perikanan. 16(1).
11. Osman, M.A., Abolfadl, Y.K., Abd El Reheem, M.A., Mahmud, M.U., Werner. K., dan Muhsend,  A.M.  (2018).  Blood  Biormarcels  in  Nile  tilapia Oreocromis  niloticus and African catfish Clarias gariepinus to Evaluated Water Quality of the Rivers and Nile . J. Fisheris Sci. 12 (1) https://doi.org/10.21767/1307-234X.100141 .