Jurnal Agrotropika Vol. 19 No. 1, Mei 2020: 35-42

## PENGGUNAAN AIR KELAPA DAN ASPIRIN UNTUK PRESERVASI
UBI JALAR  ( Ipomea batatas ) SECARA IN VITRO
Utilization of Coconut Water and Aspirin for Invitro Sweet Potatoes (Ipomea batatas) Preservation
Fitri Yelli 1*
1 Jurusan Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian, Universitas Lampung Jalan Soemantri Brojonegoro No. 1 Bandar Lampung. 35145 *E-mail: fitri.yelli79@gmail.com

## ABSTRAK
Ubi jalar  adalah  bahan  makanan  tradisional  yang  digunakan  sebagai  makanan  pokok  alternatif  yang penting bagi ketahanan pangan nasional. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk  memperoleh media yang sesuai untuk pengawetan tanaman ubi jalar dengan pertumbuh perlahan-lahan dalam medium in vitro.  Percobaan faktorial disusun  dalam  rancangan  acak  lengkap  dengan  faktor  pertama  adalah  dua konsentrasi media MS yaitu MS 1 dan MS 2. Faktor kedua adalah beberapa konsentrasi air kelapa, yaitu 0 dan 15 mg / l dan faktor ketiga adalah beberapa konsentrasi Aspirin (0, 5, 10, 15, 20  mg / l). Hasil penelitian menunjukkan bahwa jumlah daun hijau dan jumlah ruas dipengaruhi oleh konsentrasi sedang dalam enam minggu setelah tanam. Media MS1 dengan 0 mg / l Aspirin dan 15 mg / air kelapa dapat menghasilkan jumlah daun hijau yang lebih tinggi (8,0) dengan jumlah ruas 8,5. MS2 + 15 mg / l air kelapa dan 15 mg / l Aspirin adalah media terbaik untuk pengawetan ubi jalar. Data yang diperoleh juga menunjukkan bahwa semua media yang mengandung Aspirin menghasilkan jumlah akar yang tinggi.
Kata kunci: Invitro, media, preservasi, ubi jalar

## ABSTRACT
Sweet potato is  raw locally food used as an alternative  staple food that important for national food security.   The objective of the reseach was to achive the suitable medium for preservation  of  sweet potato plants by slowly growth in in vitro medium.   The factorial experiment arranged in completely randomized design with the first factor was two concentrations of MS medium: MS 1 and MS 2.   The second factor was several concentrations of coconut water, i.e.  0 and 15 mg/l and the third factor was several concentrations of Aspirin (0, 5, 10, 15, 20 mg/l) . The results showed that the number of green leaves  and  the  number  of  internodes  were  affected  by  concentrations  of  medium  in  six  weeks  after planting. The MS1 medium with 0 mg/l Aspirin and 15 mg/ coconut water could produced the higher number of green leaves (8,0) and 8,5 internodes number.  The MS2 + 15 mg/l coconut  water and 15 mg/l Aspirin was the best medium for sweet potato preservation.   Data obtained also showed that all medium containing Aspirin  produced  the high number of root.
Keywords : Sweet potato, coconut water, Aspirin, preservation, in vitro.

## PENDAHULUAN
Ubi jalar merupakan sumber karbohidrat  yang  baik,  mengandung  lebih dari 25 persen karbohidrat atau lebih dari 70 persen jika sudah dikeringkan/ditepungkan. Kandungan  karbohidratnya  hampir  sama jika  dibandingkan  dengan  beras.  Menurut
Hasyim  (2008)    bahwa  karbohidrat  yang dikandung ubi jalar masuk dalam klasifikasi Low  Glycemix  Index  tinggi,  seperti  beras dan jagung.
Ditinjau  dari  segi  produktivitas,  ubi jalar  dengan  masa  panen  4  bulan  dapat berproduksi lebih dari 30 ton/ha, tergantung dari  cara  pengolahan/budidaya,  sifat  tanah
dan bibit yang digunakan. Hal ini terjadi di beberapa  daerah  di  indonesia,  walaupun secara  rata  -  rata  produktivitas  ubi  jalar nasional baru mencapai 12 ton/ha. Bandingkan dengan produktivitas gabah  (± 4.5 ton/ha) atau pun singkong (± 8 ton/ha), padahal  umur  panen  lebih  lama  dari  umur panen ubi jalar (Siregar, 2006)
Tanaman  ubi  jalar  merupakan  salah satu    tanaman  yang  diperbanyak  secara vegetatif.    Tanaman  yang  diperbanyak secara  vegetatif  tidak  dapat  disimpan sebagai  benih  dalam  kondisi  kelembaban rendah  sehingga  koleksinya  harus  dapat dipastikan tetap ada di lapang atau di rumah kaca.  Koleksi demikian selain mahal dalam biaya  pemeliharaan,  juga  rentan  terhadap perubahan  lingkungan  seperti  iklim  dan penyakit  serta  tidak  aman  untuk  disimpan jangka  panjang.    Untuk  mempertahankan koleksi yang ada disarankan untuk menyimpan tanaman ubi jalar secara kultur in  vitro (Love et  al., 1987).    Menurut Berthaud (1997) salah satu strategi penyimpanan  tanaman  yang  diperbanyak secara klonal adalah dengan kultur in vitro . Ubi-ubian  umumnya  disimpan  dalam bentuk  tanaman  di  kebun  koleksi,  namun dengan  cara  tersebut  seringkali  terjadi kehilangan genotipe tanaman karena gangguan  hama  penyakit  dan  cekaman lingkungan.  Selain  itu,  diperlukan  tempat yang  luas,  tenaga,  dan  biaya  yang  besar untuk  mempertahankan  tanaman  dilapang. Untuk  mengatasi  masalah  ini,  ahli  plasma nutfah  mulai  menyimpan  tanaman  secara kultur in vitro.
Teknik-teknik  yang  dilakukan  untuk penyimpanan  secara in  vitro yaitu:  (a) penyimpanan  jangka  pendek  (penyimpanan dalam  keadaan  tumbuh),  (b)  penyimpanan jangka  menengah  (penyimpanan  dengan metode pertumbuhan lambat atau pertumbuhan  minimal),  (c)  penyimpanan jangka  panjang  yaitu  dengan  metode kriopreservasi. Keuntungan dari penyimpanan  dengan  metoda  pertumbuhan minimal  adalah  mudah  dan  tidak  ada masalah  dalam  regenerasi  tanaman  dan
kestabilan genetik, sedangkan kelemahannya adalah kontaminasi dan harus sering disubkultur.
Pertumbuhan  lambat  atau  minimal dapat dilakukan dengan memanipulasi suhu, cahaya, dan kultur media.  Pada kultur media, manipulasi dilakukan dengan cara menaikkan  tekanan  osmosis  (sukrosa, glikol), mengurangi unsur hara dan memperlambat pertumbuhan dengan menggunakan  retardan.    Retardan  pada umumnya  memperpendek  ruas  batang tanaman dan meningkatkan butir hijau daun.
Kelebihan  dari  pelestarian  plasma nutfah secara in vitro antara lain yaitu : (1) tidak membutuhkan tempat yang luas, dapat menghemat  tenaga  dan  biaya;  (2)  tidak menghadapi  resiko  kehilangan  genotipe akibat  gangguan  hama,  penyakit  dan cekaman lingkungan lain; (3) koleksi dalam kultur in  vitro mudah  dipertukarkan  atau dikirimkan  kepada  pengguna;  (4)  koleksi dapat segera diperbanyak dan ditumbuhkan jadi tanaman normal (Mariska et al.,1996).
Sedangkan kekurangan dari teknologi konservasi  secara in  vitro :  (1)  teknik  ini memerlukan  keahlian  yang  khusus;  (2) kemungkinan  terjadi  variasi  genetik;  (3) perlu adanya pembaharuan dengan frekuensi yang  tinggi  pada  penyimpanan  dalam keadaan tumbuh sehingga dapat meningkatkan
peluang terjadinya
kontaminasi.
Air kelapa merupakan senyawa kompleks yang didalamnya banyak mengandung  senyawa  yang  mendukung dalam media kultur jaringan antara lain gula, gula  alkohol,  asam  amino,  asam  organik vitamin,  fitohormon  dan  elemen-elemen organik  seperti  kalium,  natrium,  kalsium, magnesium, besi, tembaga, fosfor, sulfat dan klor  serta  Zat  Pengatur  Tumbuh  (George, Sherington,  1984).   Penambahan air kelapa pada  media  kultur  dapat  meningkatkan jumlah dan kecepatan pembelahan sel.
Aspirin merupakan salah satu turunan asam  salisilat.   Sintesis asam  asetil  salisilat berasal  dari  esterifikasi  asam  salisilat  dan asam  asetat.    Aspirin  didalam  media  kultur
jaringan secara otomatis dihidrolisis menjadi asam salisilat.  Asam salisilat dan Coumarin memiliki  persamaan  jalur  biosintesis  dan diklasifikasikan  sebagai  inhibitor  fenolik dan  asam  benzoik  sehingga  penggunaan coumarin  kemungkinan  dapat  digantikan dengan aspirin.
Berdasarkan  hal  di  atas  maka  pada penelitian  ini  diupayakan  untuk  dapat menyimpan  bibit  ubi  jalar  secara  in  vitro dalam  waktu  yang  relatif  lebih  lama dibandingkan  dengan  penyimpanan  biasa pada media tanam yang ditambahkan dengan air  kelapa  dan  aspirin.    Penambahan  air kelapa pada media kultur dapat meningkatkan jumlah dan kecepatan pembelahan  sel.  Hal  ini  signifikan  karena eksplan tidak mempunyai kambium (Wattimena,  1990),  sedangkan  Aspirin didalam  media  kultur  jaringan  secara otomatis dihidrolisis menjadi asam salisilat. Asam  salisilat  dan  Coumarin  memiliki persamaan jalur biosintesis dan diklasifikasikan  sebagai  inhibitor  fenolik dan  asam  benzoik  sehingga  penggunaan Coumarin  kemungkinan  dapat  digantikan dengan Aspirin.  Aspirin mudah didapat dan harganya lebih murah
Pada penelitian ini di  duga bahwa air kelapa dan Aspirin mampu mempertahankan pertumbuhan  lambat  dari  klon  ubi  jalar. Tujuan penelitian adalah untuk penyimpanan tanaman dengan cara mempertahankan pertumbuhan lambat dalam media in vitro.

## METODE PENELITIAN

## Bahan dan Media Tanam
Bahan  tanam  yang digunakan berupa stek mikro ubi jalar yang berasal dari planlet kultur  in  vitro.    Percobaan  diawali  dengan perbanyakan bahan tanam pada media MS1 dan MS2.  Setelah 1 bulan eksplan satu buku dipindah  ke  media  perlakuan  untuk penyimpanan  ubi  jalar  secara  in  vitro. Percobaan ini dilaksanakan dengan menggunakan tiga faktor yang akan diamati,
yaitu media MS (MS1 dan MS2), air kelapa (AK0 dan AK15) dan aspirin (ASP0, ASP5, ASP10,  ASP15  dan  ASP20).      Media  MS2 yaitu  media  MS  dengan  2x  unsur  makro. Selanjutnya  masing-masing  buku  akan ditanam kembali ke media perlakuan untuk penyimpanan ubi jalar secara in vitro.
Media tanam yang digunakan tersusun dari  garam  mineral  (makro  dan  mikro), vitamin,  bahan  organik  sesuai  dengan komposisi media MS (Murashige dan Skoog, 1962).    Media  untuk  perbanyakan  buku tanaman  yang  akan  digunakan  sebagai eksplan  untuk  perlakuan  adalah  MS2  yaitu media MS dengan 2x unsur makro.  Untuk media  perlakuan  digunakan  media  MS dengan penambahan air  kelapa dan  aspirin. Pada semua media yang digunakan ditambahkan  sukrosa  (30  g/l).    Sebelum disterilkan,  pH  media  diatur  sehingga mencapai 5,8 dengan HCL (1N) atau NaOH (1N).    Bahan  pemadat  agar  (6  g/l) ditambahkan ke dalam campuran  media dan dilarutkan dengan pengadukan dan pemanasan.  Media dituang ke dalam botol kultur berkapasitas 300 ml.  Setelah ditutup dengan  aluminium  foil,  botol  kultur  yang telah  di  isi  media  di  sterilkan  selama  20 menit  dalam  autoklaf  yang  dipanaskan sampai 121°C dan tekanan 1,5 kg/cm 3 .

## Rancangan Percobaan
Percobaan disusun berdasarkan Rancangan Acak Lengkap (RAL),
kombinasi dari tiga faktor dengan 20 macam perlakuan.    Setiap  perlakuan  diulang  5  kali sehingga terdapat 100 satuan percobaan.
Penelitian  ini  menggunakan  metode Rancangan Acak Kelompok (RAK) 2 faktor. Faktor  I  terdiri  dari  3  level  dan  faktor  II sebagai berikut.
P1: MS1 + AK 0 + Aspirin 0 P2: MS1 + AK 0 + Aspirin 5 P3: MS1 + AK 0 + Aspirin 10 P4: MS1 +  AK 0 + Aspirin 15 P5: MS1 +  AK 0 + Aspirin 20 P6: MS1 + AK 15 + Aspirin 0
P7: MS1 + AK 15 + Aspirin 5
Jurnal Agrotropika Vol. 19 No. 1, Mei 2020: 35-42
P8: MS1 + AK 15 + Aspirin 10 P9: MS1 +  AK 15 + Aspirin 15 P10: MS1 +  AK 15 + Aspirin 20 P11: MS2 + AK 0 + Aspirin 0 P12: MS2 + AK 0 + Aspirin 5 P13: MS2 + AK 0 + Aspirin 10 P14: MS2 +  AK 0 + Aspirin 15 P15: MS2 +  AK 0 + Aspirin 20 P16: MS2 + AK 15 + Aspirin 0 P17: MS2 + AK 15 + Aspirin 5 P18: MS2 + AK 15 + Aspirin 10 P19: MS2 + AK 15 + Aspirin 15 P20: MS2 + AK 15 + Aspirin 20
Pengamatan dilakukan
setiap minggu terhadap jumlah daun hidup, jumlah buku  dan  jumlah  akar.  Karena  ini  adalah data hitung, maka data sebelum pengolahan harus  ditransformasi  dengan 5 . 0  x . Persentase  data  dalam  bentuk  data  asli  (    ) dan  data  transformasi.    Data  pengamatan diuji  dengan  uji  F  dan  perbedaan  antar perlakuan  diuji  dengan Duncan  Multiple Range Test (DMRT) pada tingkat ketelitian 0,05 (5%).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Pada media MS2,  satu minggu setelah tanam  kalus  berwarna  putih  mulai  terlihat pada  bekas  potongan.      Pada  minggu  ke  2 sebagian  dari  kalus  tersebut  sudah  mulai membentuk  tunas-tunas  baru.    Selanjutnya tunas-tunas  ini  tidak  berkembang  dengan baik  dan  kebanyakan  dari  eksplan    yang disiapkan    hanya  terdiri  atas  1  –  3  buku setelah tanaman berumur satu bulan.  Hal ini diduga karena media yang digunakan belum optimal untuk pertumbuhan dan perkembangan  ubi  jalar  tersebut  dan diperkirakan dengan penambahan ZPT tunas atau ruas yang didapat akan lebih banyak.
Pengamatan  dilakukan  pada  eksplan, seminggu  setelah  dipindahkan  dari  media MS2 ke media perlakuan yang mengandung air  kelapa  dan  aspirin.    Pada  saat dipindahkan, eksplan hanya terdiri atas satu
buku.    Peubah  yang  diamati  yaitu  jumlah daun hidup, jumlah buku dan jumlah akar.
Tabel 1. Rekapitulasi Uji F Peubah Jumlah Daun Hidup,  Jumlah  Akar  dan  Jumlah  Buku untuk Semua Perlakuan (P1-P20)
No Peubah (pada 6 MSP) Perlakuan MS x Air Kelapa x Aspirin 1. Jumlah daun hidup * 2. Jumlah akar tn 3. Jumlah buku * Keterangan : * :  Berbeda nyata pada uji F 5%
tn :  Tidak berbeda nyata pada uji F 5% MSP :  Minggu Setelah Perlakuan
Berdasarkan  Tabel  1  di  atas  terlihat bahwa pengaruh yang nyata antara perlakuan  dengan  respon  tanaman  adalah pada  jumlah daun hidup (JDH) dan Jumlah buku  (JB).    Sedangkan  perlakuan  yang diberikan tidak berpengaruh nyata terhadap jumlah akar.
Gambar  1  menunjukkan    perbedaan respon  perlakuan  air  kelapa  dan  aspirin terhadap pertumbuhan klon ubi jalar.  Pada Gambar  1a,  memperlihatkan  pertumbuhan yang pesat eksplan ubi jalar pada perlakuan MS1+AK15+ASP0  pada  umur    6MSP,  hal ini  disebabkan  oleh  respon  pertumbuhan terhadap konsentrasi air kelapa yang tinggi. Air  kelapa  mempunyai  aktifitas  sitokinin, sedangkan sitokinin berperan penting dalam pembelahan  sel dan mendorong pembesaran sel.    Pada  Gambar  1b  terlihat  bahwa perlakuan tanpa air kelapa dengan aspirin 15 mg/l  menyebabkan  tanaman  mati.    Hal  ini terjadi  karena  aspirin  merupakan  inhibitor yang  menghambat  pembelahan  sel  pada meristem  apikal.    Gambar  1d  menunjukan keseimbangan  respon  perlakuan  air  kelapa dan  aspirin  terhadap pertumbuhan  eksplan ubi  jalar.  Gambar  1c  merupakan  tanaman kontrol.
(a) (b) (c) (d) Gambar 1. Penampilan ubi jalar dengan perlakuan air kelapa dan aspirin.
a = eksplan ubi jalar dengan MS1+AK15+ASP0; b = eksplan ubi jalar dengan MS1+AK0+ASP15; c = eksplan ubi jalar dengan MS1+AK0+ASP0 (kontrol); d = eksplan ubi jalar dengan MS2+AK15+ASP15;

## Jumlah Daun Hidup
Secara  umum  jumlah  daun  hidup paling banyak terdapat pada kontrol (aspirin 0; P1, P6, dan P16) sebesar 8,3/8,0/5,7 dan konsentrasi aspirin 5 mg/l (P2, P7 dan P12) sebesar 6,0/7,0/5,0 (Tabel 2).  Fenomena ini menunjukan  bahwa  keberadaan  aspirin menghambat  pertumbuhan  daun.    Namun pada perlakuan MS2 konsentrasi aspirin 10 dan 15 mg/l terjadi peningkatan jumlah daun hidup sebesar 5,7.  Berarti perlakuan media MS2  yang  dikombinasikan  dengan  air kelapa  dan    aspirin  cukup  baik  untuk menginduksi  atau  menumbuhkan  daun, tetapi  tidak  untuk  menumbuhkan  akar  dan buku.    Air  kelapa  mempunyai  aktivitas sitokinin  (kandungan  air  kelapa  :  1.3 difenilmea,  zeatin,  zeatin  glukosida,  dan zeatin  ribosida),  sering  digunakan  untuk stimulasi  pertumbuhan  dan  perkembangan tunas, dan efek aspirin sebagai penghambat
pertunasan  dan  pembentukan  daun  paling minimum
Berdasarkan  hasil  yang  diperoleh dalam penelitian ini terlihat bahwa perlakuan  media  P6  (MS1+Air  Kelapa 15+Aspirin  0)  menunjukkan  rata-rata  hasil yang  paling  tinggi  terhadap  jumlah  daun hidup  yaitu  8,0  dan  yang  paling  rendah adalah perlakuan P4 dengan rata-rata sebesar 1,5 (Tabel 2).
Hal  ini  disebabkan  karena  aspirin merupakan inhibitor yang mampu menghambat pertumbuhan tanaman. Aspirin  (ASA)  di  dalam  media  kultur jaringan secara otomatis dihidrolisa menjadi asam salisilat yang memiliki persamaan jalur biosintesis dengan Caumarin dan diklasifikasikan sebagai inhibitor fenolik.
Tabel  2.    Pengaruh  air  kelapa  dan  aspirin terhadap  jumlah  daun  hidup  (JDH)  pada  6 MSP
Keterangan  :  angka-angka  yang  diikuti  oleh huruf  yang  berbeda  adalah  berbeda  nyata  pada uji  DMRT  5%;  data  (asli)  transformasi transformasi  = 0.5 x 

## Jumlah Buku
Rata-rata  jumlah  buku  paling  banyak terdapat  pada  MS1+AK15+ASP0  (P6) sebesar 8.5, MS1+AK0+ASP5 (P2) sebesar 5,7.    Berdasarkan  hasil  sidik  ragam menunjukkan  bahwa  perlakuan  media berpengaruh  nyata  terhadap jumlah  buku. Perlakuan 6 (MS1 + Air Kelapa 15 + Aspirin 0)  berbeda  nyata  dengan  semua  perlakuan yang  lain  sedangkan  perlakuan  2  berbeda nyata dengan perlakuan  9, 16, 3, 20, 13, 8, 15, 14 (Tabel 3).
Tabel  3.    Pengaruh  air  kelapa  dan  aspirin terhadap jumlah buku (JB) pada 6 MSP
Keterangan  :  angka-angka  yang  diikuti  oleh huruf  yang  berbeda  adalah  berbeda  nyata  pada uji  DMRT  5%;  data  (asli)  transformasi transformasi  = 0.5 x 
Dengan  peningkatan  konsentrasi  air kelapa,  buku  yang  terbentuk  semakin
banyak, sebaliknya peningkatan konsentrasi aspirin  secara  umum  justru  menurunkan jumlah  buku.    Hal  ini  disebabkan  karena aspirin merupakan inhibitor tanaman, dimana  inhibitor  dapat  mempengaruhi jumlah ruas tanaman.
Perbedaan  inhibitor  dan  retardan adalah dalam pengaruhnya terhadap pertumbuhan ruas.  Retardan memperpendek panjang ruas sedangkan inhibitor mempengaruhi jumlah ruas.  Inhibitor pada tanaman  adalah  asam  absisik  (ABA)  dan asam-asam  fenolik  seperti  caumarin,  asam kafeik dan asam salisilat (AS/aspirin).

## Jumlah Akar
Akar terbentuk pada semua perlakuan aspirin,  tapi  dengan  jumlah  yang  tidak berbeda  nyata  antar  perlakuan  (Tabel  4). Akar  banyak  terbentuk  pada  media  dengan konsentrasi aspirin 0 mg/l dan 20 mg/l (P1, P5,  P6,  P10,  P16  dan  P20),  kecuali  pada perlakuan  MS2  +  AK0  akar  banyak terbentuk pada aspirin 10 dan 15 mg/l (P13 dan P14).
Tabel  4.    Pengaruh  air  kelapa  dan  aspirin terhadap jumlah akar (JA) pada 6 MSP
Keterangan  :  angka-angka  yang  diikuti  oleh huruf yang sama adalah tidak berbeda nyata pada uji  DMRT  5%;  data  (asli)  transformasi transformasi  = 0.5 x 
Dari Tabel 4 di atas, rata-rata akar per eksplan  paling  besar  pada  perlakuan  MS1 adalah MS1+AK0+ASP20 (P5) sebesar 5,0, MS1+AK0+ASP0 (P1; kontrol MS1) sebesar  4,3, dan MS1+AK15+ASP20 (P10) sebesar  4,0,  sedangkan  untuk  perlakuan MS2  adalah  MS2+AK15+ASP0  (P16) sebesar 3,3, MS2+AK0+ASP10/15 P1 (4.3) 2.2 bcd P11 (2.0) 1.6 P2 (5.7) 2.5 b P12 (1.7) 1.5 P3 (3.0) 1.9 cde P13 (2.0) 1.6 cde P4 (1.5) 1.4 P14 (2.0) 1.6 cde P5 (3.7) 2.0 bcde P15 (2.0) 1.6 cde P6 (8.5) 2.9 a P16 (3.0) 1.9 cde P7 (4.5) 2.2 bc P17 (2.0) 1.6 P8 (2.0) 1.6 cde P18 (3.3) 1.9 bcde P9 (3.0) 1.8 cde P19 (3.7) 2.0 bcde P10 (4.7) 2.3 bc P20 (2.3) 1.7 cde
Jumlah Buku
Perlakuan Jumlah Buku Perlakuan
P1 (4.3) 1.9 ab P11 (1.3) 1.3 P2 (3.0) 1.9 ab P12 (1.3) 1.3 P3 (4.0) 2.1 ab P13 (2.7) 1.8 ab P4 (3.5) 2.0 ab P14 (2.7) 1.6 ab P5 (5.0) 2.3 a P15 (2.0) 1.6 ab P6 (3.5) 1.9 ab P16 (3.3) 2.0 ab P7 (3.5) 2.0 ab P17 (1.0) 1.2 P8 (3.3) 1.9 ab P18 (1.7) 1.4 ab P9 (2.3) 1.6 ab P19 (1.3) 1.3 P10 (4.0) 2.1 ab P20 (1.7) 1.4 ab Perlakuan
Perlakuan Jumlah Akar Jumlah Akar
Jumlah Daun Jumlah Daun Hidup Hidup P1 (8.3) 2.9 a P11 (4.0) 2.1 P2 (6.0) 2.5 bc P12 (5.0) 2.3 abc P3 (5.0) 2.3 bc P13 (5.7) 2.5 abc P4 (1.5) 1.3 P14 (4.7) 2.3 cd P5 (4.3) 2.2 cd P15 (4.0) 2.1 P6 (8.0) 2.9 ab P16 (5.7) 2.5 abc P7 (7.0) 2.7 abc P17 (5.3) 2.4 abc P8 (4.7) 2.3 cd P18 (4.7) 2.3 cd P9 (4.3) 2.2 cd P19 (5.7) 2.5 abc P10 (5.0) 2.3 bc P20 (4.0) 2.1
Perlakuan Perlakuan
(P13/P14) sebesar 2,7 dan
MS2+AK0+ASP20 (P15) sebesar 2,0.
Pada perlakuan aspirin 0 dan 20 mg/l perkembangan  daun,  buku  dan  akar seimbang.  Namun pada perlakuan aspirin 20 mg/l pembentukan akar meningkat dibandingkan kontrol kecuali pada MS2+AK15. Media MS1 yang dikombinasikan  dengan  air  kelapa  dan aspirin  terlihat  baik  untuk  menginduksi perakaran  tanpa  mengganggu  pertumbuhan daun dan buku.
Secara  umum    konsentrasi  aspirin  5, 10  dan  15  mg/l  menghambat  pertumbuhan akar, tetapi pada konsentrasi aspirin 20 mg/l pertumbuhan  akar  justru  meningkat  lebih tinggi dibandingkan kontrol. Sehingga dapat dikatakan pengaruh aspirin dengan konsentrasi  20  mg/l  memacu  pertumbuhan akar sementara konsentrasi aspirin 5-15 mg/l menghambat  perakaran.    Aspirin  akan mempengaruhi rasio auksin-sitokinin dalam eksplan,  sehingga  pada  konsentrasi  5-15 mg/l  aspirin  menghambat  perakaran,  dan pada konsentrasi tinggi menginduksi perakaran.
Pada media MS1, peningkatan jumlah akar mulai terlihat pada aspirin 15 mg/l dan tertinggi  pada  aspirin  20  mg/l  sedangkan pada  aspirin  5  dan  10  mg/l  pembentukan akar terhambat.   Pada  media MS2, jumlah akar yang terbentuk lebih sedikit dibandingkan  dengan  MS1  begitu  juga dengan kontrol.  Hal ini diduga disebabkan karena MS2 mempunyai kandungan nitrogen  yang lebih tinggi.  Nitrogen tinggi berperan  untuk  pembentukan  vegetatif tanaman (tunas) dan menghambat perakaran. Pada  media  MS2,  peningkatan  konsentrasi garam makro MS (2xMS1) dapat meningkatkan kadar N (NH4 + ) media yang tidak cocok bagi perakaran.
Perbedaan  kandungan  N  pada  MS1 dan MS2 mempengaruhi biosintesis sitokinin.    Untuk  mengurangi  efek  tersebut maka  ke  dalam  media  ditambahkan  air kelapa  sehingga  diharapkan  rasio  auksin endogen  terhadap  sitokinin  tetap  seimbang untuk  mendukung  pembentukan  eksplan
lengkap.    Dapat  diduga  perlakuan  aspirin yang  diberikan  dapat  mempengaruhi  rasio auksin (endogen) dan sitokinin (eksogen dan endogen), konsentrasi  aspirin  yang berbeda menunjukan respon pertumbuhan daun/buku dan akar yang berbeda.
Berdasarkan hasil sidik ragam menunjukkan bahwa perlakuan media tidak berpengaruh  nyata  terhadap  jumlah  akar. Pengaruh  sitokinin  dalam  kultur  jaringan antara  lain  berhubungan  dengan  proses pembelahan sel, proliferasi tunas ketiak, dan penghambat pertumbuhan akar.

## KESIMPULAN
Media
MS2+AK15+ASP15
merupakan  media  yang  terbaik  untuk penyimpanan ubi jalar secara in vitro karena media ini mampu menghasilkan jumlah daun, jumlah buku tertinggi serta jumlah akar yang terbentuk juga banyak.

## DAFTAR PUSTAKA
Berthaud, J. 1997. Strategies for conservation of genetic  resources  in  relation  with  their utilization. Euphytica , 96: 1 – 2.
Bhojwani S.S. and M.K. Razdan.  1983.  Plant Tissue  Culture.  Theory  and  Practise. Elsevier.  Amsterdam. New York. 502 p.
George, E.F. and P.D. Sherrington. 1984. Plant propagation  by  tissue  culture.    England Exegetic Ltd. 709 p.
Hasyim, A dan M. Yusuf.   2008.  Diversifikasi Produk Ubi Jalar Sebagai bahan Pangan Subsitusi Beras.  Tabloid Sinar Tani. Malang.
Lowe, S.L., B.B. Rhodes and J.W. Moyer. 1997.
Meristem-tip culture and virus indexing of sweet potatoes.  IBPGR. Rome. Italy.
Mandang, J.P.  1993.  Peranan air kelapa dalam kultur jaringan tanaman krisan ( Crysanthemum  morifolium RAMAT). Program  Pasca  Sarjana.  IPB.  Bogor.
Bogor. (Tidak dipublikasikan).
Mariska , I., Suwarno dan Djoko S. Damardjati. 1996.  Pengembangan konservasi in vitro
Jurnal Agrotropika Vol. 19 No. 1, Mei 2020: 35-42
sebagai  salah  satu  bentuk  pelestarian plasma  nutfah  di  dalam  bank  gen. Seminar  penyusunan  konsep  pelestarian Ex  situ Plasma  Nutfah  Pertanian,  18 Desember. Balitbio Bogor.
Roostika, I.T., 2003.  Studi penyimpanan kultur in vitro tunas ubi jalar (Ipomea batatas (L.) Lam)  secara  kriopreservasi.    Tesis Program  Pascasarjana.    Institut  Pertanian Bogor.  Bogor.
Ross, A. F.  1961.  Systemic acquired resistance induced  by  localized  virus  infection  in plant. Virology , 13, 340 – 358.
Siregar, J.  2006.  Ubi Jalar Sumber Pangan Pokok Alternatif.  http://www.mail-
archive.com/tionghoa- net@yahoogroups.com/msg09402.html
Stallknecht, G. F. and S. Farnswort. 1979.  The effect of nitrogen on the coumarin-induced tuberization  of  potato  axillary  shoots cultured in vitro . Am.  Potato J . 56: 523 – 530.
Wattimena, G. A. 1992. Bioteknologi Tanaman . Pusat Antar Universitas Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Wattimena, G. A. 1988. Zat Pengatur Tumbuh Tanaman .  Pusat Antar Universitas Institut Pertanian Bogor, Bogor.