Penggunaan Probiotik Untuk Menekan Populasi Bakteri Vibrio sp. Pada Budidaya Udang Vaname ( Litopenaeus vannamei )
Use of probiotics to fight bacterial populations of Vibrio sp. on vaname shrimp cultivation ( Litopenaeus vannamei )

## Muhammad Fadhil Mustafa,  Margaretha Bunga, Marlina Achmad
Program Studi Budidaya Perairan, Departemen Perikanan, Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan, Universitas Hasanuddin,
Jln. Perintis Kemerdekaan Km 10, Makassar, 90245 correspondent author: muhfadhilmustafa@gmail.com

## Abstrak
Konsekuensi dari budidaya udang super intensif adalah peningkatan limbah akuakultur dan penularan penyakit. Bakteri Vibrio sp. merupakan agen penyebab penyakit pada larva udang pada saat udang dalam keadaan stress dan lemah, serta dapat menyebabkan kematian. Penerapan probiotik, yakni mikroorganisme menguntungkan mampu mendegradasi bahan organik, mereduksi penyakit, dan membantu mempercepat proses siklus nutrien sebagai konsekuensi dari  budidaya udang super  intensif. Probiotik komersial  yang telah ada saat  ini adalah campuran beberapa jenis mikroorganisme menguntungkan yakni Bacillus sp., Pseudomonas sp., Nitrosomonas sp., Aerobacter sp.,  dan Nitrobacter sp.  Tujuan  penelitian  ini  adalah  mengevaluasi  penggunaan  probiotik dengan  selang  waktu  berbeda  dalam  menghasilkan  penurunan  jumlah  populasi  bakteri Vibrio sp.  Metode penelitian yang diterapkan adalah dengan perlakuan pemberian probiotik komersial pada selang waktu yang berbeda yakni tiga, lima, dan tujuh hari serta tanpa pemberian probiotik sebagai kontrol. Selanjutnya populasi bakteri dihitung dengan total plate count (TPC). Hasil penelitian  menunjukkan  bahwa pemberian probiotik signifikan  berpengaruh  terhadap  penurunan  jumlah  populasi  bakteri Vibrio Sp.  Pemberian  probiotik  selang waktu  tiga  hari  menunjukkan  penurunan  jumlah  populasi  bakteri  yang  signifikan  berbeda  dengan  kontrol, namun sama dengan perlakuan pemberian selang lima dan tujuh hari. Penurunan jumlah populasi bakteri pada pelakuan selang tiga, lima, dan tujuh hari berturur-turut adalah 0.05 x 10 4 , 0.41 x 10 4 , dan 0.61 x 10 4 CFU/ml. Penelitian  ini  merekomendasikan  bahwa  penggunaan  probiotik  komersial  selang  waktu  tujuh  hari  untuk budidaya  udang  vaname  super  intensif.  Penggunaan  probiotik  selang  tiga  hari  mengindikasikan  dampak terhadap meningkatnya biaya pengeluaran untuk probiotik. Kajian probiotik komersial yang dimodifikasikan dengan mikroorganisme alami diduga dapat mengefesiensikan biaya operasional budidaya udang.
Kata kunci: bakteri Vibrio sp, probiotik, udang vaname, budidaya super intensif.

## Abstract
The  consequence  of  super  intensive  shrimp  farming  is  an  increase  in  aquaculture  waste  and  disease transmission. Vibrio sp . Bacteria is a disease-causing agent in shrimp larvae when the shrimp is in a state of stress and weakness, and can cause death. The application of probiotics, namely beneficial microorganisms can degrade organic matter, reduce disease, and help accelerate the process of nutrient cycles as a consequence of super intensive shrimp farming. Commercial probiotics currently available are a mixture of several types of beneficial  microorganisms,  namely Bacillus  sp ., Pseudomonas  sp. , Nitrosomonas sp . , Aerobacter sp.,  and Nitrobacter sp. The purpose of this study was to evaluate the use of probiotics with different time intervals to produce  a  decrease  in  the  population  of Vibrio sp.  The  research  method  applied  was  the  treatment  of commercial probiotics at different intervals of three, five, and seven days and without the administration of probiotics as controls. Furthermore, the bacterial  population was calculated by total plate count (TPC). The results showed that the administration of probiotics had a significant effect on the decrease in the population of Vibrio sp. Provision of probiotics three days apart showed a decrease in the number of bacterial populations that were significantly different from the controls, but the same as the administration of intervals of five and seven days. The decrease in the number of bacterial populations in the treatment interval of three, five, and seven days in a row is 0.05 x 10 4 , 0.41 x 10 4 , and 0.61 x 10 4 CFU / ml. This study recommends that the use of  commercial  probiotics  intervals  of  seven  days  for  super  intensive  vaname  shrimp  farming.  The  use  of probiotics for three days indicates an impact on the increase in expenditure costs for probiotics. Commercial probiotic studies modified with natural microorganisms are thought to be able to streamline the operational costs of shrimp farming.
Keywords: Vibrio sp. bacteria, probiotics, vaname shrimp, super intensive cultivation

## Pendahuluan
Udang  vaname ( Litopenaeus vannamei )  merupakan salah satu komoditas perikanan yang memiliki nilai ekonomi yang tinggi dan banyak diminati karena kandungan nilai gizi yang  baik.  Tingginya  permintaan  udang  vaname  ini,  mendorong  pembudidaya  untuk meningkatkan produksi dengan penyempurnaan teknik budidaya. Budidaya udang vaname dengan  pola  super  intensif  merupakan  sistem  budi daya  masa  depan  dengan  antara lain  padat  tebar yang tinggi dan produktivitas yang tinggi (Herdianti dkk., 2015) .
Teknologi  budidaya  udang  vaname  super  intensif  dapat  menjadi  orientasi  sistem budidaya  dengan  konsep  padat  tebar  tinggi.  Teknologi  budidaya  ini  memiliki  ciri  luasan petak tambak 1.000 meter persegi, dengan kedalaman air >1,8 m, padat penebaran tinggi, produktivitas  tinggi  dan  pengaplikasian  pakan  yang  tinggi  pula  (Syah  dkk,  2017). Konsekuensi  sistem budidaya  super intensif ini adalah menurunnya kualitas air budidaya seperti  meningkatnya  limbah  akuakultur  berupa  bahan  organik,  sisa  pakan,  feses,  dan peningkatan  densitas  fitoplankton  serta  berkembangnya  bakteri  patogen  yang  dapat menyebabkan kematian kultivan budidaya (Herdianti dkk., 2015).
Bakteri patogen dapat menyerang larva udang pada saat udang dalam keadaan stress dan lemah. Salah satu bakteri patogen yang sering ditemukan dalam budidaya udang adalah bakteri Vibrio sp. Bakteri Vibrio sp. ini dapat hidup di perairan khususnya perairan budidaya sehingga dapat mengancam kehidupan kultivan yang dibudidaya. Vibrio sp. sering dikatakan bakteri  opportunistik  patogen.  Akibat  infeksi  mikroorganisme  pathogen  tersebut,  banyak organisme  perairan  yang  dibudidayakan  mengalami  kematian  massal  sehingga menimbulkan kerugian ekonomi yang cukup tinggi (Kaligis, 2015).
Salah satu upaya  yang dilakukan untuk mengatasi bakteri patogen dan  memperbaiki kualitas air adalah dengan penggunaan probiotik. Mansyur dan Tangko (2016) menyatakan bahwa probiotik memiliki keuntungan yang dapat digunakan untuk mengendalikan patogen pada inang dan lingkungan, menstimulasi imunitas udang dan sebagai perbaikan kualitas air. Selain menjaga atau mengendalikan patogen di lingkungan budidaya, probiotik juga dapat berperan mengendalikan bakteri patogen ini pada saluran pencernaan.
Selain berperan dalam mengendalikan bakteri patogen maupun kualitas air, probiotik juga dapat berperan dalam meningkatkan pertumbuhan dan sintasan. Penelitian Yudiati dkk (2010), menunjukkan nilai pertumbuhan dan sintasan pada udang vaname yang diberikan probiotik mengalami peningkatan. Dengan nilai pertumbuhan dan sintasan masing-masing 8  gram/ekor  dan  97,33  %.  Hal  ini  juga  sesuai  dengan  yang  dikemukakan  oleh  Gunarto (2008),  penambahan  bakteri  probiotik  ke  wadah  pemeliharaan  udang  vaname  dapat
berfungsi  sebagai  komplemen  sumber  pakan  atau  kontribusi  pada  sistem  pencernaan makanannya dan juga menekan populasi bakteri patogen karena bakteri probiotik mampu menghasilkan  bahan  anti  bakteria  misalnya  respon  kekebalan,  terutama  sintasan  dan pertumbuhan udang.
Walaupun probiotik sudah diketahui sangat bermanfaat untuk memperbaiki kualitas air perairan tambak, tetapi dalam pengaplikasian pada tambak ternyata pada tingkat petani tambak  masih  mengalami  kesulitan  dalam  penentuan  efisiensi  penggunaan  probiotik. Penggunaan probiotik tersebut harus sesuai petunjuk aplikasi dan tergantung peruntukannya, sehingga tidak akan menambah biaya produksi (Burhanuddin dkk, 2016).
Efisiensi  dan  efektifitas  dalam  pengaplikasian  probiotik,  tentunya  terkait  dengan efektifitas dan efisiensi biaya produksi yang digunakan untuk pemeliharaan atau budidaya. Jika aplikasi probiotik terlalu sering diberikan, sementara jumlah populasi Vibrio sp. pada perairan  budidaya  masih  rendah  maka  hal  ini  dapat  menambah  biaya  dan  tidak  efisiens. Sebaliknya jika aplikasi probiotik terlambat diberikan dan Vibrio sp. pada perairan budidaya jumlah populasi semakin banyak dan berkembang, hal tersebut dapat memicu udang yang dibudidayakan  terserang  atau  terinfeksi  bakteri Vibrio sp.  yang  dapat  mengakibatkan kematian pada udang yang dibudidayakan.
Berdasarkan masalah tersebut, maka akan dilakukan penelitian penggunaan probiotik untuk  melawan  populasi  bakteri Vibrio sp.  pada  budidaya  udang  vaname  ( Litopenaues vannamei ). Penelitian ini perlu dilakukan agar pembudidaya dapat mengetahui pemberian probiotik yang baik dan sesuai peruntukannya.

## Bahan dan Metode

## Sampel air budidaya udang vaname
Sampel air merupakan air budidaya dari penelitian udang vaname yang dilakukan di Desa  Lawallu,  Kecamatan  Soppeng  Riaja,  Kabupaten  Barru,  Sulawesi  Selatan.  Sampel diambil pada awal pemeliharaan dan akhir pemeliharaan.

## Pemberian probiotik
Pemberian probiotik pada air budidaya dilakukan dengan perlakuan tanpa pemberian probiotik dan pemberian probiotik selang tiga hari, selang lima hari, selang tujuh hari dengan masing dosis 0,5 ppm sebanyak 0,1 ml.

## Pembuatan TCBSA ( Thiosulphate Citrate Bile Salt Agar )
Timbang  bubuk  TCBSA  sebanyak  8,8  gram  dan  NaCl  sebanyak  1,5  gram.  Setelah ditimbang,  bubuk  TCBSA  dan  NaCl  dihomogenkan.  Lalu  dilarutkan  dengan  aquades sebanyak 150 ml. Kemudian panaskan media yang dibuat di atas hotplate sampai mendidih. Setelah  mendidih,  media  dinginkan  sebentar  sebelum  dituangkan  ke  dalam  cawan  petri sebanyak 10 ml, dan dinginkan media sampai mengeras.
Isolasi Bakteri Vibrio sp.
Siapkan larutan fisiologis, kemudian diisi ke dalam 5 tabung reaksi masing-masing sebanyak  9  ml.  Ambil  air  sampel  sebanyak  1  ml  menggunakan  mikropipet,  kemudian tuangkan ke tabung reaksi yang telah diisi larutan fisiologis dan homogenkan menggunakan vortex.  Tabung  pertama  diberi  label  pengenceran 10 −1 .  Pengenceran  dengan  mengambil sampel  sebanyak  1  ml  pada  tabung  reaksi 10 −1 ke  tabung  reaksi  kedua 10 −2 .  Pada pengenceran 10 −2 ambil 1 ml lagi dan masukkan ke dalam tabung 10 −3 . Pada tabung ke 10 −3 ambil lagi sebanyak 1 ml lalu masukkan ke dalam tabung 10 −4 . Dan tabung 10 −4 juga ambil  1  ml  kemudian  di  masukkan  ke  dalam  tabung 10 −5 .  Setelah  pengenceran  selesai, sediakan cawan media TCBSA yang telah dibuat. Kemudian ambil air larutan sampel yang telah  diencerkan  sebanyak  10 𝜇𝑙 menggunakan  mikropipet  pada  pengenceran 10 −1 dan teteskan ke media TCBS Agar lalu ulas menggunakan cell spreader sampai kering. Lakukan hal tersebut sampai pengeceran 10 −5 selesai. Setelah itu bungkus plastik dan dimasukkan ke dalam inkubator dengan suhu 35 °𝐶 selama 24 jam.

## Analisis data
Data jumlah populasi awal dan akhir bakteri Vibrio sp. pada setiap perlakuan  yang didapatkan,  kemudian  dianalisis  menggunakan  analisis  ragam  (ANOVA),  apabila  data berpengaruh nyata maka dilanjutkan dengan uji lanjut W-tukey.

## Hasil dan Pembahasan
Populasi  awal  dan  akhir  bakteri Vibrio sp.  yang  didapatkan  pada  media  budidaya udang  vaname  yang  diberikan  perlakuan  tanpa  probiotik  dan  pemberian  probiotik  selang waktu tiga hari, lima hari dan tujuh hari dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Jumlah populasi awal dan akhir bakteri Vibrio sp. pada budidaya udang vaname
Perlakuan
Jumlah Populasi Bakteri (Rata-rata ± Std.Dev) Awal [ x 10 4 CFU/ml] Akhir [ x 10 4 CFU/ml ] A 0,8 ± 0,42 a 1,11 ± 0,59 a B 0,46 ± 0,10 a 0,05 ± 0,02 b C 0,48 ± 0,11 a 0,41 ± 0,16 ab D 0,65 ± 0,25 a 0,62 ± 0,25 ab
Keterangan : Huruf yang berbeda pada kolom yang sama menunjukkan perbedaan nyata antar perlakuan pada taraf 5% (p<0,05). A = tanpa probiotik, B = pemberian selang waktu tiga hari, C = pemberian selang waktu lima hari dan D = pemberian selang waktu tujuh hari.
Pada Tabel 1 menunjukkan bahwa perlakuan berpengaruh signifikan terhadap populasi bakteri Vibrio sp. Perlakuan A memberikan pengaruh berbeda nyata dengan perlakuan B. Perlakuan B memberikan pengaruh yang tidak berbeda nyata dengan perlakuan C dan D. Dan  perlakuan  C  dan  D  tidak  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  A  dan  perlakuan B.  Tren kenaikan dan penurunan jumlah populasi Vibrio sp. dapat dilihat pada Gambar 1.
Gambar 1. Kenaikan dan penurunan populasi awal dan akhir bakteri Vibrio sp. keterangan A = tanpa probiotik, B = pemberian probiotik selang waktu tiga hari, C = pemberian probiotik selang waktu lima hari dan D = pemberian probiotik selang tujuh hari.
Penurunan dan kenaikan populasi Vibrio sp. dapat dilihat ada Gambar 1. Populasi akhir pada perlakuan B mengalami penurunan dibandingkan dengan populasi diawal  penelitian yakni  88,49  %.  Perlakuan  C  mengalami  penurunan  populasi Vibrio sp.  hanya  14,48  %, sedangkan  penurunan  populasi Vibrio sp.  pada  perlakuan  D  hanya  4,59  %.  Dan  pada perlakuan A justru mengalami kenaikan populasi Vibrio sp. yakni sebesar 38,75 %.
Populasi bakteri Vibrio sp pada perlakuan B menghasilkan jumlah populasi bakteri Vibrio sp. lebih sedikit dibandingkan pada tiga perlakuan yang lain. Hal tersebut dikarenakan pada  pemberian  selang  tiga  hari,  intensitas  pemberian  probiotik  lebih  banyak  sehingga jumlah bakteri menguntungkan dalam perairan juga lebih banyak Sedangkan pada perlakuan C  dan  D  intensitas  pemberian  probiotiknya  lebih  rendah  sehingga  bakteri  patogen  yang berada di perairan jauh lebih banyak. Pattukumar dkk (2010), menyatakan bahwa tingginya
0 2000 4000 6000 8000 10000 12000 A B C D Po pul as i V Ibr io sp. Perlakuan Selama Penelitian Awal Akhir
populasi bakteri menguntungkan dapat menjaga kualitas air budidaya, mereduksi populasi Vibrio sp., menurunkan penyakit dan penyebab stress.
Kemampuan probiotik dalam menekan jumlah bakteri Vibrio sp. ini juga dipengaruhi oleh kombinasi bakteri yang terkandung dalam probiotik  yang digunakan seperti Bacillus sp.,  Pseudemonas  sp.,  Nitrosomonas  sp.,  Aerobacter  sp.  dan  Nitrobacter  sp..  Kombinasi tersebut  menghasilkan  interaksi  yang  menghasilkan  berbagai  jenis  enzim  yang  dapat menghambat  pertumbuhan  bakteri  lain  seperti  bakteri  Vibrio  sp.  Hal  ini  sesuai  dengan pendapat yang dikemukakan oleh Kauffman dkk (2000; dalam Luturmas, 2013) bahwa dari sifat suatu organisme yang bersimbiosis dengan mikroorganisme lain kerja menjadi lebih optimal dalam menghadapi organisme lain, hal tersebut dikenal sebagai Quorum Sensing.
Keberadaan Vibrio sp. pada perairan budidaya juga dipengaruhi oleh parameter fisika dan  kimia.  Salah  satu  parameter  yang  bisa  mempengaruhi  adalah  parameter  kimia  yang didalamnya  termasuk  kadar  amoniak  serta  bahan  organik  pada  budidaya.  Seperti  yang dikemukakan oleh Kharisma (2012), bahwa parameter fisika dan parameter kimia yang tidak baik menjadi penyebab kelimpahan jumlah bakteri Vibrio sp. pada air pemeliharan udang vaname.
Penelitian yang dilakukan oleh Naskah (2019) didapatkan konsentrasi amoniak pada media budidaya udang vaname yang diberikan probiotik selang waktu tiga hari lebih rendah yaitu  0,33  mg/L.  Rendahnya  konsentrasi  amoniak  pada  media  budidaya  yang  diberikan probiotik  ini  terjadi  disebabkan  adanya  proses  nitrifikasi  dan  denitrifikasi  oleh  bakteri Nitrosomonas sp.  dan Nitrobacter sp.  yang  dimiliki  probiotik.  Sehingga  proses  reduksi amoniak  berjalan  lebih  cepat  daripada  tanpa  penambahan  bakteri  probiotik  (Chrisnawati, 2018). Sedangkan penelitian Miranda (2019) menunjukkan jumlah bahan organik yang lebih rendah  pada  perlakuan  pemberian  probiotik  selang  waktu  tiga  hari  yakni  43,29  mg/L. Rendahnya  bahan  organik  tersebut  disebabkan  oleh  pemberian  probiotik,  seperti  yang dikemukakan oleh Hartini (2013) bahwa peran bakteri probiotik dalam media pemeliharaan salah satunya adalah menjaga kestabilan bahan organik total, sehingga bahan organik yang terakumulasi mampu diturunkan nilainya melalui proses bioremediasi.
Menurut Santos (2014) proses bioremediasi bahan organik dipengaruhi oleh kinerja enzim  sebagai  katalisis  reaksi  biokimia  dalam  air,  sehingga  mampu  mempercepat proses degradasi bahan organik dan komponen toksik seperti amoniak. Enzim tersebut diproduksi oleh mikroorganisme seperti Bacillus sp. Bakteri Bacillus sp. juga menggunakan amoniak untuk  pertumbuhan  dan  sumber  energi  proses  dekomposisi  bahan  organik  tersebut. Pemberian probiotik selang tiga hari ini bisa diterapkan pada budidaya udang vaname untuk
menekan dan menurunkan jumlah populasi Vibrio sp. dan juga meningkatkan pertumbuhan ataupun sintasan dari udang vaname itu sendiri. Seperti yang dikemukanan oleh Chrisnawati (2018)  bahwa  data  sintasan  udang  vaname  tertinggi  berada  pada  perlakuan  dengan pemberian probiotik selang tiga hari (77 %). Sedangkan nilai kelulushidupan udang vaname yang paling rendah ditunjukkan pada perlakuan tanpa pemberian probiotik atau perlakuaan kontrol (40%).

## Simpulan
Penelitian ini menyimpulkan bahwa pemberian probiotik selang waktu tiga merupakan yang terbaik untuk diterapkan pada budidaya udang vaname dengan menghasilkan populasi akhir Vibrio sp.  yakni  0,05  x 10 4 CFU/ml.  Sedangkan  populasi  tertinggi  berada  pada perlakuan tanpa pemberian probiotik yakni 1,11 x 10 4 CFU/ml.

## Daftar Pustaka
Arief, M., N.  Fitriani dan S. Subekti. 2014. Pengaruh Pemberian Probiotik Berbeda Pada Pakan Komersial Terhadap Pertumbuhan dan Efi- siensi Pakan Ikan Lele Sanglariang (Clarias sp.). Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan 6(1) : 49 - 52.
Burhanuddin, Wahyu, F., & Suratman. (2016). Aplikasi Probiotik Dengan Kosentrasi Yang Berbeda  Terhadap  Pertumbuhan  Udang  Vannamei  (Litopenaeus  Vannamei). OCTOPUS Jurnal Ilmu Perikanan, 5(1), 462 – 465.
Cahyono. 2009. Budidaya Biota Air Tawar. Kanisius. Yogyakarta
Chrisnawati,  V.,  Setya,  B.,  &  Hastuti,  W.  (2018).  Pengaruh  Pemberian  Probiotik dengan Waktu  Berbeda  Terhadap  Penurunan  Amoniak  dan  Bahan  Organik  Total  Media Pemeliharaan  Udang  Vaname  (  Litopenaeus  vannamei  )  Universitas  Airlangga Surabaya . Penelitian. 7(2).
Gullian M., Thompson F. dan Rodriguez J.  2004. Selection of probiotic bacteria and study of their immunostimulatory effect in Pennaeus vannamei. Aquaculture, 233:1-14.
Gunarto dan A. Mansyur, 2005. Budidaya udang vaname (Litopenaeus vannamei) di tambak dengan  padat  tebar  berbeda  menggunakan  sistem  pemupukan  susulan.  Balai  Riset Perikanan Budidaya Air Payau. Maros.
Hartini, S., Ade D. S., dan Ferdinand H. T. 2013. Kualitas Air, Kelangsungan Hidup dan Pertumbuhan Benih Ikan Gabus (Channa striata) yang Dipelihara dalam Media dengan Penambahan Probiotik. Akuakultur Rawa Indonesia, 1(2) :192-202.
Herdianti, L., Soewardi, K., & Hariyadi, S. (2015). Effectiveness on the Use of Bacteria for Improvement  of  White  Shrimp  (Litopenaeus  vannamei)  Super  Intensive  Culture Media. Jurnal Ilmu Pertanian Indonesia, 20(3), 265 – 271.
Higa, T dan Parr, J.F. 1994.  Beneficial and Effective Microorganisms  For  A Sustainable Agriculture and Enviroment. USA
Kaligis, E. 2015. Respons Pertumbuhan Udang Vaname (Litopenaeus vannamei) di Media Bersalinitas Rendah dengan Pemberian Pakan Protein dan Kalsium Berbeda. Ilmu Dan Teknologi Kelautan Tropis, 7(1), 225 – 234.
Kharisma, A., Abdul, M. 2012. Kelimpahan Bakteri Vibrio Sp. Pada Air Pembesaran Udang Vaname (Litopenaeus vannamei) Sebagai Deteksi Dini Serangan Penyakit Vibriosis. Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan Vol. 4 No. 2.
Luturmas, A. 2013. Isolasi Dan Identifikasi Bakteri Penghambat Bakteri Vibrio Sp. Jurnal Triton. Volume 9, Nomor 1, April 2013, hal. 63 – 74.
Mansyur,  A.,  &  Tangko,  A.  M.  (2016).  Probiotik:  Pemanfaatannya  Untuk  Pakan  Ikan Berkualitas Rendah. Media Akuakultur, 3(2), 145-149.
Miranda, 2019. Aplikasi Probiotik Dengan Selang Waktu Pemberian Berbeda Dalam Media Budidaya Udang Vaname (Litopenaeus vannamei) Terhadap Perubahan Konsentrasi Bahan Organik Di Bak Terkontrol. SKRIPSI. Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan. Universitas Hasanuddin. Makassar.
Naskah, 2019. Pengaruh Selang Waktu Pemberian Probiotik Terhadap Konsentrasi  NH3 Media  Budidaya  Udang  Vannamei  Di  Bak  Terkontrol.  SKRIPSI.  Fakultas  Ilmu Kelautan dan Perikanan. Universitas Hasanuddin. Makassar.
Pattukumar,  V.,  Kanmani,  P.,  R.  S.  Kumar,  N.  Yuvaraj,  K.A.Paari,  and  V.  Arul.  2010. Comaprison  of  antimicrobial  activity  of  probiotic  bacterium  Streptococcus  Phocae P180,  Enterococcus  faecium  MC13  and  Carnobacterium  divergens  Against  fish pathogen.World, J.Dairy & FoodSci.,5:145-151
Purwanta, W, dan M. Firdayati, 2002. Pengaruh Aplikasi Probiotik pada Kualitas Kimiawi Perairan Tambak Udang. Jurnal Teknologi Lingkungan. 3(1):61-65
Santos, G. 2014. Probiotics: An Essential Tool in Intensive Shrimp Aquaculture. 8 hal.
Saoud, I. P., D. A. Davis and D. B. Rouse. 2003. Suitability Studies of Inland Well Waters for Litopenaeus vannamei    Culture.    Aquaculture, 217: 373-3.
Suprapto. 2005. Petunjuk Teknis Budidaya Udang vannamei (Litopenaeus vannamei). CV Biotirta. Bandar Lampung. 25 hal.
Suprapto, 2007. Aplikasi Probiotik dalam Budidaya Udang Intensif. Pusat Riset Perikanan Budidaya, Kuta-Bali, 12 November 2007
Syah,  R.,  &  Fahrur,  M.  (2017).  Budidaya  udang  vaname  dengan  padat  penebaran  tinggi,
12(129), 19 – 26.
Trisna,  D.E.,  A.  D.  Sasanti,  dan  Muslim.  2013.  Populasi  Bakteri,  Kualitas  Air  Media Pemeliharaan  dan  Histologi  Benih  Ikan  Gabus  (Channa  striata)  yang  Diberi  Pakan Berprobiotik. Jurnal Akuakultur Rawa Indonesia, 1(1): 90-102.
Yudiati. E., Z.  Arifin dan I. Riniatzih. 2010. Pengaruh  Aplikasi Probiotik Terhadap  Laju Sintasan  dan  Pertumbuhan  Tokolan  Udang  Vannamaei  (Litopenaeus  vannamei), Populasi  Bakteri  Vibrio,  Serta  Kandungan  Amoniak  dan  Bahan  Organik  Media Budidaya. Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan. Universitas Diponegoro. Semarang.
Yunita, M. Yusuf, H, dan Rini, Y. 2015. Analisis Kuantitatif Mikrobiologi pada Makanan Penerbangan (Aerofood ACS) Garuda Indonesia Berdasarkan TPC (Total Plate Count) dengan metode Rour Plate. Jurnal Keteknikan Pertanian Tropis dan Bioristem. Vol. 3 No.3, 237-248.