## PENDAHULUAN
Penyakit busuk kering umbi akibat infeksi Fusarium spp. merupakan salah satu kendala dalam budidaya kentang. Penyakit  ini  tidak  hanya  menyerang  umbi  di  lahan  tetapi juga umbi yang tersimpan di gudang sehingga menyebabkan kerugian hingga 25% (Duriat, 2006). Gejala awal umbi yang terserang berupa munculnya bercak-bercak berlekuk coklat
atau hitam dan memperlihatkan gejala mummifikasi, yaitu kering, berkerut, dan keras (Wharton et al., 2007). Pengujian  untuk  mengetahui  respon  ketahanan terhadap busuk kering umbi biasanya dilakukan dengan cara inokulasi cendawan pada umbi kentang (Daami-Remadi et al., 2006). Pemanfaatan seleksi sifat tertentu pada kultur in vitro memiliki  peluang  untuk  mendapatkan  klon  kentang adaptif dengan waktu, tenaga, biaya, dan bahan tanam yang lebih sedikit. Seleksi in vitro juga dilakukan pada lingkungan terkontrol  sehingga  pengaruh  kerusakan  akibat  perlakuan dapat diketahui dengan jelas. Pemanfaatan seleksi in vitro
Ketahanan Beberapa Klon Kentang ( Solanum tuberosum L.) terhadap Asam Fusarat dan Penyakit Busuk Kering Umbi
Resistance of Potato (Solanum tuberosum L.) Clones to Fusaric Acid and Dry Rot
Dewi Citra Sari 1 , Diny Dinarti 2 , Willy Bayuardi Suwarno 2 , dan Agus Purwito 2*
1 Program Studi Pemuliaan dan Bioteknologi Tanaman, Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor 2 Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor (Bogor Agricultural University), Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680, Indonesia
Diterima 19 Juni 2015/Disetujui 12 Februari 2016

## ABSTRACT
Fusaric acid produced by Fusarium spp. played a major role in potato dry rot development. Using fusaric acid as a selection agent may be useful to identify resistant clones. The aim of this experiment was to evaluate the morphological responses of 10 potato clones (Granola, Atlantic, Cipanas, DTO 28, DTO 33, Russet Burbank, IPB 1, CIP 801040, CIP 801045, dan CIP 801050) and their resistance level to fusaric acid and Fusarium solani. The research was conducted in Plant Breeding Laboratory and Tissue Culture Laboratory 3, Departement of Agronomy and Horticulture from April 2014- February 2015. The in vitro experiment was arranged in a randomized block design with 4 fusaric acid concentrations and 4 replications, while the F. solani infection experiment was arranged in a completely randomized design with 5 replications. The result showed that fusaric acid inhibits growth, reduce microtubers production, and caused planlets death. Correlation analysis between in vitro resistance to fusaric acid and F. solani infection on tuber showed positive and notable result. Accordingly, fusaric acid can be used to identify any clones resistant to F. solani.
Keywords: Fusarium solani, phytotoxin, selection

## ABSTRAK
Asam  fusarat  yang  dihasilkan  Fusarium  spp.  berperan  penting  dalam  perkembangan  busuk  kering  umbi  sehingga berpeluang untuk digunakan dalam kegiatan seleksi kentang. Penelitian bertujuan untuk mengevaluasi respon dan tingkat ketahanan beberapa klon kentang (Granola, Atlantik, Cipanas, DTO 28, DTO 33, Russet Burbank, IPB 1, CIP 801040, CIP 801045, dan CIP 801050) terhadap asam fusarat dan Fusarium solani. Penelitian dilakukan di Laboratorium Kultur Jaringan 3 dan Laboratorium Pemuliaan Tanaman, Departemen Agronomi dan Hortikultura sejak bulan April 2014 – Februari 2015. Pengujian in vitro menggunakan rancangan acak kelompok (RAK) pada 4 taraf konsentrasi asam fusarat dan 4 ulangan. Pengujian infeksi F. solani pada umbi G0 menggunakan rancangan acak lengkap (RAL) dengan 5 ulangan. Hasil pengujian menunjukkan bahwa cekaman asam fusarat secara in vitro menghambat pertumbuhan, menurunkan produksi umbi mikro, dan menyebabkan kematian sebagian planlet kentang. Tingkat ketahanan terhadap asam fusarat secara in vitro dan infeksi F. solani pada umbi mempunyai korelasi linear searah yang kuat. Oleh karena itu, asam fusarat dapat digunakan sebagai agen seleksi pada kegiatan pemuliaan tanaman kentang tahan terhadap F. solani.
Kata kunci: fitotoksin, Fusarium solani, seleksi
sudah banyak dilakukan pada tanaman kentang seperti yang dilakukan  oleh  Maharijaya et  al. (2008)  untuk  menguji ketahanan  beberapa  klon  kentang  terhadap  penyakit  layu bakteri dan busuk lunak.
Seleksi  sifat  ketahanan  terhadap Fusarium spp. secara in  vitro pada  beberapa  spesies  tanaman  dilakukan menggunakan toksin murni asam fusarat. Metode ini sudah digunakan  dalam  pemuliaan  pisang  kepok  (Damayanti, 2010),  vanili  (Nurcahyani et  al., 2012),  dan  markisa (Flores et  al., 2012).  Penelitian  tersebut  menunjukkan adanya korelasi positif antara gejala dan kejadian penyakit akibat perlakuan asam fusarat secara in vitro dan infeksi F. solani secara in vivo . Korelasi positif antara produksi asam fusarat  dan  patogenitas Fusarium spp.  juga  menunjukkan bahwa asam fusarat berperan penting dalam perkembangan penyakit  busuk  kering  umbi  kentang  (Venter  dan  Steyn, 1998).  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mempelajari  tingkat ketahanan  beberapa  klon  kentang  terhadap  asam  fusarat dan  infeksi Fusarium spp.  serta  mengevaluasi  efektivitas penggunaan asam fusarat dalam seleksi ketahanan tanaman terhadap Fusarium spp.

## BAHAN DAN METODE
Respon Morfologi dan Ketahanan Beberapa Klon Kentang terhadap Asam Fusarat secara In Vitro
Penelitian  dilaksanakan  di  Laboratorium  Kultur Jaringan  3,  Departemen Agronomi  dan  Hortikultura  IPB, pada  bulan April  sampai  dengan  Juli  2014.  Sepuluh  klon kentang  (Granola,  Atlantik,  Cipanas,  DTO  28,  DTO  33, Russet  Burbank,  IPB  1,  CIP  801040,  CIP  801045,  dan CIP  801050)  dievaluasi  respon  morfologi  dan  tingkat ketahanannya terhadap asam fusarat (0, 5, 10, dan 15 mg L -1 )  secara in  vitro. Pengujian  dilakukan  menggunakan rancangan acak kelompok (RAK) dengan 4 ulangan. Setiap satuan percobaan terdiri atas 3 botol yang masing-masing berisi 3 eksplan.
Penelitian  ini  menggunakan  media  MS0  +  CAP  5 mg L -1 tanpa ZPT dengan penambahan asam fusarat sesuai perlakuan. Sterilisasi asam fusarat menggunakan filter 0.22 µm  (millipore).  Kultur  kentang in  vitro diinkubasi  dalam ruang  kultur  bersuhu  20-22 o C  dengan  intensitas  cahaya ±1,000 lux. Pengamatan dilakukan setiap minggu hingga 4 minggu setelah tanam (MST). Pengamatan dilakukan pada karakter  vegetatif  (jumlah  tunas,  buku,  akar,  dan  tinggi planlet)  serta  persentase  tanaman  mati  untuk  menentukan kejadian penyakit masing-masing klon yang diuji. Kriteria ketahanan  klon  kentang  terhadap  asam  fusarat  ditentukan berdasarkan Purwati et al. (2007) (Tabel 1).
Produksi Umbi Mikro Kentang pada Media Tercekam Asam Fusarat
Penelitian  dilaksanakan  di  Laboratorium  Kultur Jaringan  3,  Departemen Agronomi  dan  Hortikultura  IPB, pada bulan Juni sampai dengan September 2014. Sepuluh klon  kentang  (Granola,  Atlantik,  Cipanas,  DTO  28, DTO
33, Russet Burbank, IPB 1, CIP 801040, CIP 801045, dan CIP  801050)  diuji  kemampuan  produksi  umbi  mikronya pada    media    tercekam    asam    fusarat    (0,  5,  10,  dan  15 mg L -1 ) secara in vitro. Pengujian dilakukan menggunakan rancangan acak kelompok (RAK) dengan 6 ulangan. Setiap satuan percobaan terdiri atas 1 botol yang masing-masing terdiri dari 2 eksplan.
Planlet kentang yang telah berumur 4 minggu diinduksi umbi mikronya dengan menambahkan media pengumbian cair. Media pengumbian cair merupakan media MS0 + gula 90 g L -1 + Chlorocholine  Chloride  (CCC) 400 g L -1 + air kelapa 20% + Benzil Aminopurin (BAP) 10 g L -1 + asam fusarat  20  mg  L -1 .  Tanaman  kemudian  disimpan  dalam ruang gelap hingga minggu ke-12 setelah tanam pada suhu 18-22 o C.  Pengamatan  jumlah  umbi  terbentuk  dilakukan setiap minggu (5-13 MST).

## Inokulasi Fusarium solani pada Umbi G0
Penelitian  dilaksanakan  di  Laboratorium  Pemuliaan Tanaman dan Laboratorium Kultur Jaringan 3, Departemen Agronomi dan Hortikultura IPB, pada bulan Desember 2014 sampai Februari 2015. Umbi G0 dari setiap klon (Granola, Atlantik, Cipanas, DTO 28, DTO 33, Russet Burbank, IPB 1,  CIP  801040,  CIP  801045,  dan  CIP  801050)  diambil secara  acak  untuk  digunakan  dalam  pengujian  dengan suspensi konidia F. solani . Umbi G0 yang diuji merupakan umbi mini hasil aklimatisasi yang dilakukan pada Oktober- Desember 2014 di screenhouse di Balai Penelitian Tanaman Hias (Balithi) Segunung.
Inokulasi F.  solani dilakukan  dengan  menyuntikkan suspensi  konidia  dengan  kerapatan  10 6 spora  mL -1 pada umbi dengan kedalaman luka 5-7 mm. Pengujian dilakukan pada dua sisi umbi (pangkal dan ujung). Umbi yang sudah diberi  perlakuan  kemudian  disimpan  di  ruang  preparasi laboratorium  dalam  wadah  tertutup  dalam  kondisi  kering dan temperatur suhu ruang (25-26 o C).
Pengujian  dilakukan  menggunakan  rancangan  acak lengkap  (RAL)  1  faktor,  yaitu  klon  kentang  dengan  5 ulangan.  Setiap  satuan  percobaan  terdiri  atas  30  umbi. Pengamatan  dilakukan  pada  10  umbi  secara  destruktif setiap  minggu  hingga  minggu  ke-3.  Pengamatan  respon umbi setelah inokulasi F. solani dilakukan dengan metode scoring menurut  Chehri et  al. (2011).  Skor  1  jika  tidak ditemukan  gejala  serangan,  skor  2  jika  serangan  penyakit ringan,  skor  3  jika  serangan  penyakit  sedang,  dan  skor  4 jika busuk kering umbi sangat parah dan meluas. Kriteria ketahanan klon kentang terhadap infeksi F. solani mengacu pada metode Leach dan Webb (1981) (Tabel 1).
Data  kuantitatif  hasil  pengamatan  dianalisis  dengan uji  F  pada  taraf  5%.  Jika  perlakuan  berpengaruh  nyata, dilakukan  uji  lanjut Duncan  Multiple  Range  Test pada taraf  5%.  Korelasi  kriteria  ketahanan  planlet  terhadap asam fusarat dan umbi terhadap infeksi F. Solani dilakukan menggunakan uji korelasi Spearman dengan terlebih dahulu mengubah masing-masing kriteria ketahanan ke dalam skala ordinal 1-5. Skala 5 untuk kriteria tahan (T) dan berurutan hingga skala 1 untuk kriteria sangat rentan (SR).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Respon Morfologi dan Tingkat Ketahanan Planlet Kentang terhadap Asam Fusarat secara In Vitro
Toksisitas  asam  fusarat  terhadap  tanaman  kentang in  vitro ditentukan  oleh  tingkat  kejadian  penyakit.  Gejala kelayuan batang maupun daun tidak ditemukan pada 1-4 MST sehingga kejadian penyakit hanya dihitung dari persentase eksplan yang mati. Kematian eksplan rata-rata terjadi pada fase awal yaitu sebelum terjadi inisiasi tunas dan akar. Stek buku tunggal yang mati ditandai dengan perubahan warna
eksplan dari hijau menjadi coklat atau putih, sedangkan stek buku tunggal yang berhasil menginisiasi pembentukan tunas dan akar mampu bertahan hidup meskipun pertumbuhannya lambat.
Gambar 1 menunjukkan persentase kematian planlet kentang in vitro selama 4 minggu setelah subkultur akibat perlakuan asam fusarat. Eksplan tidak ada yang mati pada 1-3 MST pada media tanpa asam fusarat dan hanya terdapat 1%  planlet  yang  mati  pada  minggu  ke-4.  Media  dengan perlakuan  asam  fusarat  menyebabkan  sebagian  eksplan kentang  gagal  membentuk  tunas  dan  akar,  kemudian mati.  Persentase  kematian  planlet  juga  meningkat  pada setiap  peningkatan  konsentrasi  asam  fusarat.  Perlakuan asam fusarat 5, 10, dan 15 mg L -1 menyebabkan kematian planlet berturut–turut dengan rataan ± 2%, 9%, dan 10%. Penelitian  sebelumnya  menyebutkan  bahwa  asam  fusarat dapat menyebabkan kematian sel dan menurunkan tingkat proliferasi kultur sel Arabidopsis thaliana pada konsentrasi 1.79  mg  L -1 (Bouizgarne et  al., 2006a)  dan  menghambat perkecambahan biji markisa hingga 20% pada konsentrasi 17.9 mg L -1 (Flores et al., 2012). Planlet  pada  media  tercekam  asam  fusarat  memiliki tinggi,  panjang  akar,  dan  ukuran  daun  yang  lebih  rendah daripada kontrol dengan perbedaan yang signifikan (Tabel 2). Planlet pada media dengan asam fusarat 15 mg L -1 hanya mempunyai mencapai 25-28% dari tinggi tanaman kontrol, sedangkan ukuran daunnya hanya mencapai 25-38% panjang dan lebar daun kontrol. Planlet yang tercekam asam fusarat juga memiliki panjang akar 3-4% dari panjang akar planlet kontrol. Asam fusarat berpengaruh negatif terhadap aktivitas
Gambar 1. Persentase kematian planlet kentang in vitro pada 4 perlakuan konsentrasi asam fusarat
Konsentrasi asam fusarat (mg L -1 ) Tinggi (cm) Panjang akar (cm) Panjang daun (mm) Lebar daun (mm) 0 5.3a 12.4a 3.1a 2.8a 5 1.4b 0.4b 1.2b 0.8b 10 1.4b 0.7b 0.7c 0.5b 15 1.5b 0.4b 0.9c 0.7b
Tabel 2. Rata-rata tinggi, panjang akar, dan ukuran daun tanaman kentang in vitro berumur 4 MST pada perlakuan asam fusarat
0 2 4 6 8 10 12 0 5 10 15 Pe rse nt ase k emat ia n pl an le t (%) Konsentrasi asam fusarat (mg L -1 ) 1 MST
2 MST 3 MST 4 MST KP (%) S Kriteria ketahanan 0 ≤ KP ≤ 5 1.0 ≤ S ≤ 1.6 Tahan (T) 5 < KP ≤ 10 1.6 < S ≤ 2.2 Agak Tahan (AT) 10 < KP ≤  25 2.2 < S ≤ 2.8 Agak Rentan (AR) 25 < KP ≤  50 2.8 < S ≤ 3.4 Rentan (R) 50 < KP ≤ 100 3.4 < S ≤ 4.0 Sangat Rentan (SR) Tabel  1.  Kriteria  ketahanan  planlet  terhadap  asam  fusarat dan umbi terhadap infeksi F. solani
Keterangan:  Penentuan  interval  pada  kolom  1  mengacu  pada metode  Purwati et  al. (2007)  dan  interval  pada kolom  2  mengacu  pada    metode  Leach  dan  Webb (1981).    KP  =  Persentase  kejadian  penyakit  akibat cekaman asam fusarat. S = Rentang skor serangan busuk kering umbi akibat infeksi F. solani
meristematik.  Gejala  penghambatan  tumbuh  akibat  toksin yang  dihasilkan  oleh Fusarium spp.  juga  ditemukan pada pertumbuhan bibit semangka (Wu et al., 2008). Perbedaan tersebut jelas terlihat pada karakter tinggi tanaman dan akar primer  yang  lebih  pendek.  Perbedaan  tinggi  dan  panjang akar planlet kentang ditunjukkan pada Gambar 2.
Setiap  klon  memiliki  respon  yang  berbeda  terhadap perlakuan  asam  fusarat.  Perbedaan  sangat  nyata  terlihat pada  klon  DTO  33  yang  mengalami  rata-rata  kejadian penyakit  hingga  30%,  sedangkan  klon  yang  lain  hanya mengalami  kejadian  penyakit  kurang  dari  10%  (Gambar 3).  Tabel  3  menunjukkan  bahwa  Atlantik,  Granola,  CIP 801040, CIP 801050, DTO 28, Cipanas, IPB 1, dan Russet Burbank  termasuk  dalam  kategori  tahan  (T),  CIP  801045 dalam  kategori  agak  tahan  (AT),  dan  DTO  33  dalam kategori rentan (R). Klon yang termasuk kategori tahan juga diketahui memiliki jumlah tunas, jumlah buku, jumlah akar, panjang akar, dan tinggi tanaman yang lebih tinggi daripada lainnya.

## Produksi Umbi Mikro Kentang pada Media Tercekam Asam Fusarat
Pembentukan  umbi  kentang  selain  dipengaruhi  oleh faktor genetik, juga dipengaruhi oleh lingkungan sehingga
sensitivitas tanaman kentang terhadap keadaan lingkungan tumbuh yang terlihat pada respon pembentukan umbi dapat digunakan untuk menduga tingkat ketahanan klon kentang terhadap cekaman, baik biotik maupun abiotik (Dobranszki et  al .,  2008).  Asam  fusarat  20  mg  L -1 ditambahkan  ke dalam media pengumbian dengan tujuan agar dapat diamati kemampuan  planlet  kentang  menginduksi  umbi  mikro secara in vitro pada kondisi tercekam asam fusarat. Umbi  mikro  kentang  pada  suhu  18-22 o C  mulai terbentuk  satu  minggu  setelah  penambahan  media pengumbian  cair.  Rata-rata  jumlah  umbi  pada  setiap  klon yang relatif sedikit ditunjukkan pada Tabel 4. Pada kentang Granola, induksi umbi mikro secara in vitro pada kondisi optimal dapat menghasilkan 1.3 umbi per eksplan (Purwito dan Wattimena, 2008), sedangkan pada penelitian ini kentang Granola hanya mampu menginduksi 0.3 umbi per eksplan. Penambahan  asam  fusarat  dalam  media  pengumbian  cair diduga menekan pembentukan umbi mikro sehingga rata- rata jumlah umbi sangat kecil. Berdasarkan karakter jumlah umbi,  klon  CIP  801040  diketahui  memiliki  jumlah  umbi lebih tinggi daripada Granola, Atlantik, serta klon lainnya.
Perlakuan  asam  fusarat  juga  tidak  menyebabkan kerusakan  pada  umbi  mikro  kentang.  Umbi  mikro  tidak mengalami  gejala  busuk  kering.  Hal  ini  menunjukkan bahwa  asam  fusarat  tidak  merusak  jaringan  secara  fisik. Sesuai dengan pernyataan Bouizgarne et al. (2006b), asam fusarat  lebih  berpengaruh  pada  pertumbuhan  tanaman dengan  mengganggu  sistem  fisiologi  tanaman  sehingga pada  penelitian  ini  hanya  berpengaruh  pada  tertekannya produksi umbi mikro.

## Ketahanan Klon Kentang terhadap Penyakit Busuk Kering Umbi
Perlakuan  suspensi F.  solani mampu  menyebabkan gejala  busuk  kering  umbi.  Zona  nekrosis  terlihat  jelas seperti lapisan pembatas berwarna coklat muda dan terlihat pertumbuhan  miselium  berwarna  putih.  Pengamatan respon terhadap infeksi F. solani dilakukan pada tiga waktu inkubasi.  Pengamatan  dilakukan  dengan  metode scoring menurut Chehri et al . (2011). Umbi yang terserang busuk kering beserta skor untuk membedakan tingkat keparahan serangan ditunjukkan pada Gambar 4.
Kriteria  ketahanan  ditentukan  berdasarkan  rataan skor  busuk  kering  umbi  pada  masa  inkubasi  2  minggu. Pembandingan  respon  pada  masa  inkubasi  2  minggu dilakukan karena penyakit busuk kering pada 10 klon yang diuji telah memiliki tingkat keparahan yang sama pada masa inkubasi  3  minggu.  Klasifikasi  10  klon  yang  diuji  adalah sebagai  berikut:  Russet  Burbank  termasuk  kategori  tahan (T); Granola, CIP 801040, CIP 801050, DTO 28, Cipanas dan IPB 1 termasuk agak tahan (AT); sedangkan Atlantik, CIP 801045, dan DTO 33 termasuk agak rentan (AR) (Tabel 5). Russet Burbank diharapkan menjadi klon harapan yang tahan  terhadap  penyakit  busuk  kering  umbi.  Sifat  tahan Russet  Burbank  juga  ditunjukkan  pada  pengujian  dengan asam fusarat.
Gambar  2.  Perbedaan  tinggi  tanaman  dan  panjang  akar  planlet kentang IPB 1 in vitro pada 4 MST akibat perlakuan asam  fusarat.  A.  Asam  Fusarat  0  mg  L -1 ;  B.  Asam Fusarat 5 mg L -1 ; C. Asam Fusarat 10 mg L -1 ; D. Asam Fusarat 15 mg L -1 A B C D
Korelasi  Tingkat  Ketahanan  Beberapa  Klon  Kentang terhadap Asam Fusarat secara In Vitro dan Penyakit Busuk Kering Umbi di Lapangan
Tingkat  ketahanan  terhadap  asam  fusarat  secara in vitro dan infeksi F. solani pada umbi pada minggu kedua pengamatan  mempunyai  hubungan  linier  yang  kuat  dan searah dengan nilai sebesar 0.87 dan nyata pada taraf 1%.
Gambar 3. Perbedaan tingkat kejadian penyakit pada 10 klon kentang yang diuji secara in vitro
Genotipe Ketahanan Jumlah tunas Jumlah buku Jumlah akar Panjang akar (cm) Tinggi tanaman (cm) Atlantik AR 1.06a 4.30ab 1.23cde 2.12d 2.10cd Granola T 1.04a 4.11b 1.24cde 2.39bcd 3.31b CIP 801040 AT 0.98ab 4.96ab 1.43cd 3.84bcd 2.56bc CIP 801045 AR 1.12a 3.57b 0.66f 3.84bcd 1.74de CIP 801050 AT 1.12a 3.78b 1.43cd 3.62bcd 2.01cd DTO 28 AT 1.09a 4.54b 0.94def 3.88bcd 1.69de DTO 33 SR 0.86b 3.18c 0.76ef 3.02bcd 1.52e Cipanas AT 1.09a 4.86ab 2.07ab 4.49b 2.15d IPB 1 T 1.02a 4.76ab 1.80bc 1.99cd 2.03cd Russet Burbank T 1.00ab 6.04a 2.54a 5.62a 4.42a Tabel 3. Respon beberapa klon kentang terhadap perlakuan asam fusarat 0-15 mg L -1 pada 4 MST
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama artinya tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf α = 5%. Kriteria ketahanan: T = tahan; AT = agak tahan; AR = agak rentan; R = rentan; dan SR = sangat rentan. Tingkat ketahanan ditentukan berdasarkan kejadian penyakit (KP) pada perlakuan asam fusarat 15 mg L -1 No. Klon Jumlah umbi No. Klon Jumlah umbi 1 Atlantik 0.2b 6 DTO 28 0.6b 2 Granola 0.3b 7 DTO 33 0.0b 3 CIP 801040 1.4a 8 Cipanas 0.2b 4 CIP 801045 0.0b 9 IPB 1 0.3b 5 CIP 801050 0.1b 10 Russet Burbank 0.3b
Tabel 4. Rata-rata jumlah umbi mikro kentang per eksplan pada media tercekam asam fusarat 20 mg L -1 pada 13 MST
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama artinya tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf α = 5%
0 5 10 15 20 25 30 35 Atlantik Granola CIP 801040 CIP
801045 CIP 801050 DTO 28 DTO 33 Cipanas IPB 1 Russet Burbank K ej ad ia n pe ny ak it (%) Klon 1 MST 2 MST 3 MST 4 MST

## A
Korelasi membuktikan bahwa asam fusarat memiliki peran penting terhadap perkembangan busuk kering umbi kentang sesuai  dengan  hasil  penelitian  El-Hassan et  al. (2007). Hasil pengujian R 2 sebesar 0.76 menunjukkan bahwa 76% pengkategorian  kriteria  ketahanan  umbi  kentang  terhadap infeksi F.  solani dapat  dijelaskan  oleh  kriteria  ketahanan planlet akibat cekaman asam fusarat, sedangkan 24% lainnya dipengaruhi  oleh  faktor  lain.  Faktor  lain  tersebut  dapat
berupa fitotoksin  lain yang dihasilkan F. solani (Rehman et al., 2012; Ramanathan et al., 2015) atau jenis patogen lain yang juga menyerang umbi saat pengujian (Wharton et al., 2007).

## KESIMPULAN
Perlakuan asam fusarat secara in vitro dan inokulasi suspensi konidia F. solani mampu menunjukkan perbedaan tingkat  ketahanan  terhadap  penyakit  busuk  kering  umbi pada kentang Granola, Atlantik, CIP 801040, CIP 801045, CIP 801050, DTO 28, DTO 33, Cipanas, IPB 1, dan Russet Burbank. Cekaman asam fusarat secara in vitro menghambat
pertumbuhan,  produksi  umbi  mikro,  dan  menyebabkan kematian sebagian planlet kentang. Infeksi F. solani pada umbi G0 juga menunjukkan gejala busuk kering umbi yang berbeda pada setiap klonnya. Russet Burbank menunjukkan ketahanan yang baik terhadap cekaman asam fusarat pada kultur in vitro dan infeksi Fusarium spp. pada umbi. Tingkat ketahanan terhadap asam fusarat secara in vitro dan infeksi F.  solani pada  umbi  mempunyai  korelasi  linear  searah yang kuat. Pengujian menggunakan asam fusarat secara in vitro dapat menggambarkan respon klon kentang terhadap Fusarium spp. di lahan. Oleh karena itu, asam fusarat dapat digunakan  sebagai  agen  seleksi  pada  kegiatan  pemuliaan tanaman kentang tahan terhadap Fusarium spp. Klon Masa inkubasi Ketahanan 1 minggu 2 minggu 3 minggu Atlantik 2.25abcd 2.45ab 3.70 AT Granola 2.15bcd 2.00ab 3.15 AR CIP 801040 2.35abcd 2.20ab 3.70 AR CIP 801045 2.55abcd 2.45ab 3.55 AT CIP 801050 2.70abcd 2.10ab 3.70 AR DTO 28 2.10cd 2.15ab 3.00 AR DTO 33 2.60abcd 2.25ab 3.65 AT Cipanas 2.05d 1.90bc 3.40 AR IPB 1 2.45abcd 2.10ab 2.90 AR Russet Burbank 2.25abcd 1.60c 2.85 T
Tabel 5. Rataan skor kejadian busuk kering umbi setelah inokulasi F. solani pada 3 masa inkubasi yang berbeda
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf α = 5%; Skor : 1 = tanpa  gejala; 2 = gejala  busuk  ringan; 3 = gejala  busuk sedang; dan 4 = gejala busuk parah. Kriteria  ketahanan: T = tahan; AT = agak tahan; AR = agak rentan; R = rentan; dan SR = sangat rentan. Tingkat ketahanan ditentukan berdasarkan rataan skor busuk kering umbi pada masa inkubasi 2 minggu
Gambar 4.  Gejala busuk kering akibat infeksi Fusarium solani. (A) Irisan melintang umbi terinfeksi; (B) Umbi tanpa infeksi (skor 1); (C) Umbi terinfeksi ringan (skor 2); (D) Umbi terinfeksi sedang (skor 3); (E) Umbi terinfeksi parah (skor 4); Skala 1 : 4
A B C D E

## DAFTAR PUSTAKA
Bouizgarne,  B.,  H.  El-Maarouf-Bouteau,  C.  Frankart, D.  Reboutier,  K.  Madiona,  A.M.  Pennarun,  M. Monestiez,  J.  Trouverie,  Z.  Amiar,  J.  Briand,  M. Brault,  J.P.  Rona,  Y.  Ouhdouch,  I.  El-Hadrami,  F. Bouteau.  2006a.  Early  physiological  responses  of Arabidopsis thaliana cells to fusaric acid: toxic and signaling effects. New Phytol. 169:209-218.
Bouizgarne,  B.,  H.  El-Maarouf-Bouteau,  K.  Madiona,  B. Biligui,  M.  Monestiez,  A.M.  Pennarun,  Z.  Amiar, J.P. Rona, Y. Ouhdouch, I. El-Hadrami, F. Bouteau. 2006b. A putative role for fusaric acid in biocontrol of  the  parasitic  angiosperm Orobanche  ramose. MPMI. 19:550-556.
Chehri,  K.,  N.F.  Mohamed,  B.  Salleh,  Z.  Latiffah.  2011. Occurrence and pathogenicity of Fusarium spp. on potato tubers in Malaysia. Afr. J. Agric. Res. 6:3706- 3712.
Daami-Remadi,  M.,  H.  Jabnoun-Khiareddine,  F.  Ayed,
M.  El  Mahjoub.  2006.  Effect  of  temperature  on aggressivity  of  Tunisian Fusarium species  causing potato  ( Solanum  tuberosum L.)  tuber  dry  rot.  J. Agron. 5:350-355.
Damayanti, F. 2010. Peningkatan ketahanan pisang kepok ( Musa paradisiaca L.) hasil kultur jaringan terhadap penyakit layu fusarium melalui seleksi asam fusarat. Jurnal Ilmiah Faktor Exacta. 3:310-319.
Dobranszki, J., K. Magyar-Tabori, I. Hudak. 2008. In vitro tuberization  in  hormone-free  systems  on  solidified and  dormancy  of  potato  microtubers.  Fruit  Veg. Cereal Sci. Biotech. 2:82-94.
Duriat, S.A., O.S. Gunawan, N. Gunaeni. 2006. Penerapan Teknologi  PHT  pada  Kentang.  Balai  penelitian Tanaman Sayuran. Bandung.
El-Hassan, K.I., M.G. El-Saman, A.A. Mosa, M.H. Mostafa. 2007.  Variation  among Fusarium spp.  the  causal of  potato  tuber  dry  rot  in  their  pathogenicity  and mycotoxins production. Egypt J. Phytopathol . 35:53- 68.
Flores,  P.S.,  W.C.  Otoni,  O.D.  Dhingra,  S.P.S  de  Souza- Diniz,  T.M.  dos  Santos,  C.H.  Bruckner.  2012.  In vitro selection of yellow passion fruit genotypes for
resistance to Fusarium vascular wilt. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 108:37-45.
Leach, S.S., R.E. Webb. 1981. Resistance of selected potato cultivars and clones to Fusarium dry rot. Phytopathol. 71:623-629.
Maharijaya, A., M. Mahmud, A. Purwito. 2008. Uji ketahanan in vitro klon-klon kentang hasil persilangan kentang kultivar Atlantik dan Granola terhadap penyakit layu bakteri  ( Ralstonia  solanacearum )  dan  busuk  lunak ( Erwinia carotovora ). Bul. Agron. 36:133-138.
Nurcahyani, E., I. Sumardi, B. Hadisutrisno, E. Suharyanto. 2012.  Penekanan  perkembangan  penyakit  busuk batang vanili ( Fusarium oxysporum f. spp vanillae ) melalui seleksi asam fusarat secara in vitro . J. HPT
Tropika. 12:12-22.
Purwati, R.D., S. Harran, Sudarsono. 2007. In vitro of abaca for resistance to Fusarium oxysforum f.sp. cubense . HAYATI J. Biosci. 65-70.
Purwito, A., G.A. Wattimena. 2008. Kombinasi persilangan dan  seleksi  in  vitro  untuk  mendapatkan  kultivar unggul kentang. JIPI. 13:140-149.
Ramanathan, G., N. Mahalakshmi, E.R. Shiny, J.I. Suresh. 2015.  Evaluation  of  phytotoxic  and  bioactive potential of paclitaxel from Fusarium solani . Int. J. Curr. Microbiol. Appl. Sci. 4:64-74.
Rehman, A., A. Rehman, N. Javed, A.U. Malik, S. Mehboob. 2012.  Toxin  production  by Fusarium  solani from declining  citrus  plants  and  its  management. Afr.  J. Biotechnol. 11:2199-2203.
Venter, S.L., P.J. Steyn. 1998. Correlation between fusaric acid production and virulence of isolates of Fusarium oxysporum that causes potato dry rot in South Africa. Potato Res. 4:289-294.
Wharton, P., R. Hammerschmidt, W. Kirk. 2007. Fusarium dry rot. Michigan State University Extension Bulletin. E-2995.
Wu, H.S., W. Bao, D.Y. Liu, N. Ling, R.R. Ying, W. Raza, Q.R. Shen. 2008. Effect of fusaric acid on biomass and photosynthesis of watermelon seedlings leaves. Caryologia. 61:258-268.