## ANTIBACTERIAL ACTIVITY TEST OF DUKU FRUIT SEEDS (Lansium domesticum) AGAINST STAPHYLOCOCUS AUREUS AND ESCHERICHIA COLI BACTERIES

## UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK BIJI BUAH DUKU Lansium domesticum TERHADAP BAKTERI STAPHYLOCOCUS AUREUS DAN ESCHERICHIA COLI
Albrita Pehino 1)* , Fatimawali 1) , Elly J. Suoth 1)
1) Program Studi Farmasi FMIPA UNSRAT Manado, 95115 *pehino97@gmail.com

## ABSTRACT
Duku (Lansium domesticum) provides many benefits for the community. Apart from the fruit which has high nutritional  value,  duku  is  believed  by  the  community  to  have  benefits.  The  study  aims  to  learn  about  the antibacterial extract of my seed against the staphylococus aureus and escherichia coli. This study used the meseration method with ethanol as a solvent. The antibacterial activity test used the well diffusion method with a concentration of 10%, 20%, 30%, 40%. The positive control used was Ciprofloxacin and the negative control  used  was  the  CMC  solution.  Studies  show  that  the  suppression  of  extract  is  10%,  20%,  30%,  and 40%  staphylococus  aureus,  the  average  drip  zone  is  11.3mm,  13.3mm,  13.6mm,  11,3mm,  and  escherichia coli, on average, 10 mm,  9,3mm, 10,3mm, 12,6 mm. The results suggest that the extract of the duku fruit has antibacterial activity against the growth of the staphylococcus aureus and escherichia coli.
Keywords: Duku seed, Antibacterial, Antibacterial activity.

## ABSTRAK
Duku  ( Lansium  domesticum) banyak  memberikan  manfaat  bagi  masyarakat.  Selain  buahnya  yang mempunyai  nilai  gizi  tinggi,  duku  dipercaya  masyarakat  memiliki  manfaat  untuk  kesehatan.  Penelitian  ini bertujuan  untuk  mengetahui  aktivitas  antibakteri  ekstrak  biji  duku  terhadap  bakteri staphylococus  aureus dan Escherichia  coli .  Penelitian  ini  menggunakan  metode  maserasi  dengan  pelarut  etanol.  Uji  aktivitas antibakteri menggunakan metode difusi sumuran  dengan konsentrasi 10%, 20%, 30%, 40%. Kontrol positif yang  digunakan  adalah Ciprofloxacin  dan  kontrol  negatif  yang  digunakan  adalah  larutan  CMC. Hasil penelitian  menunjukan  bahwa  daya  hambat  ekstrak  dengan  konsentrasi  10%,  20%,  30%,  dan  40% Staphylococcus aureus rata-rata  zona beningnya 11,3mm, 13,3mm, 13,6mm, 11,3mm, dan Escherichia coli rata-rata    zona  beningnya  10  mm,  9,3mm,  10,3mm,  12,6  mm.  Dari  hasil  yang  didapatkan disimpulkan bahwa  ekstrak  biji  buah  duku  memiliki  aktivitas  antibakteri  terhadap  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli .
Kata Kunci :Biji buah duku, Antibakteri, Aktivitas antibakteri.

## PENDAHULUAN
Duku  ( Lansium  domesticum) adalah  salah satu tanaman khas Indonesia. Tanaman ini hampir terdapat di seluruh wilayah Indonesia, mulai Aceh sampai  Irian  Jaya,  sehingga  dikenal  nama  seperti duku  Medan,  duku  Komering,  duku  Sleman  dan duku Hatu (Yulita, 2011; Hanum et  al ., 2013).
Duku Lansium  domesticum dilaporkan memiliki  berbagai  macam  aktivitas  farmakologis seperti antimalaria, antitumor, antikanker, antibakteri, antimelanogenesis, antimutagenik dan antioksidant (Saewan et al ., 2006).
Duku ( Lansium domesticum) banyak memberikan  manfaat  bagi  masyarakat.        Batang dan daun Duku (Lansium domesticum)
menunjukan aktivitas antibakteri terhadap Escherichia  coli,  Staphylococcus  aureus, dan Bacillus  subtilis (Loekitowati  dan  Hermansjah, 2000).
Sedangkan ekstrak methanol Duku (Lansium domesticum) dapat  menghambat  pertumbuhan bakteri Bacillus  cereus dan Escherichia  coli . Senyawa yang memiliki aktivitas ini diidentifikasi sebagai triterpenoid,14hydroxy-7 (Mayanti et  al ., 2007).
Berdasarkan hasil penelitian sebelumnya telah  melakukan  Uji  Aktivitas  Antibakteri Ekstrak  Daun  Duku  ( Lansium  domesticum Var  duku  Hasskl )  Terhadap Staphylococcus aureus dan Pseudemonas aeruginosa. Ekstrak etanol  dan  ekstrak  n-heksana  daun  duku memiliki aktivitas antibakteri terhadap Staphylococcus  aureus dan Pseudemonas aeruginosa. Pelarut  etanol  menghasilkan ekstrak daun duku dengan aktivitas antibakteri  yang  lebih  baik  dari  pada  ekstrak n-heksana  terhadap Staphylococcus  aureus dan Pseudemonas
Aeruginosa. Nilai Konsentrasi Hambat Minimum (KHM)
ekstrak etanol daun duku adalah 17,5 % untuk Staphylococcus  aureus dan  12,5  %  untuk Pseudemonas. Aeruginosa (Wijaya, 2017).
Biji  duku  ( Lansium  domesticum )  juga dilaporkan  mengandung  senyawa  terpenoid, steroid,  glikosida,  flavonoid,  dan  alkaloid  yang berperan sebagai antibakteri (Supriyono, 2007).
Antibakteri sendiri  dapat  didefenisikan sebagai  suatu senyawa,  baik  alami  maupun sintetik yang  mempunyai efek menekan atau menghentikan suatu proses biokimia di dalam organisme,  khususnya  dalam  proses  infeksi oleh  bakteri.  Proses  tersebut  dilakukan
melalui  penghambatan  sintesis  dinding  sel, sintesis  protein,  sintesis    asam  nukleat,  serta menghambat  jalur  metabolisme  sehingga menghancurkan struktur membran sel (Tenover, 2006).

## METODOLOGI PENELITIAN Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  Agustus 2020-Oktober 2020 diLaboratorium Mikrobiologi, Program Studi Farmasi, Fakultas Matematika dan Ilmu  Pengetahuan  Alam,  Universitas  Sam Ratulangi, Manado.

## Bentuk Penelitian
Bentuk dari penelitian ini adalah eksperimental  laboratorium  yang  akan  menguji aktivitas antioksidan dengan menggunakan metode  sumuran  dari  ekstrak  etanol  biji  buah duku ( Lansium domesticum ).

## Alat dan Bahan Alat
Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini antara  lain:  oven,  blender,  timbangan  0,1gr-0,1 mg, batang pengaduk kaca 20-30cm, corong gelas 5-7,5cm,  botol  kaca,  neraca  analitik,  mikropipet 1000  µL,  cawan  petri,  tabung  reaksi,  gelas  ukur 100ml,  beaker  glass  (100  mL;dan  500  mL), lumpang,  mortir,  kain  kasa,  kertas  saring,  kertas label,  aluminium  foil,  ayakan  no.  40  mesh,  gelas Erlenmeyer  (100  mL  ;  dan  250ml),  rak  tabung 15mm,  korek  api,  Bunsen,  jarum  ose,  pengaris, pinset,  tisu, autoclave,  laminar air flow .
Bahan
Biji  buah  duku  ( Lansium  domesticum ), biakan  murni  bakteri Escherichia  coli, dan Staphylococcus  aureus ,  medium  Nutrient  Agar (NA),  larutan  NaCl  0.9%,  Carboxy  Methyl Cellulose  (CMC),  larutan  H 2 SO 4 1%,  larutan BaCl 2 1%, larutan etanol 96%, aquades.

## Prosedur Penelitian Preparasi Sampel
Biji  duku  dipisahkan  dari  daging  buah  dan dibersihkan  dengan  air  yang  mengalir,  ditiriskan kemudian di masukkan dalam Oven 40℃ . Setelah sampel  kering  kemudian  dihaluskan  dengan  cara diblender. Selanjutnya ditimbang didapatkan  250 gram serbuk biji duku.

## Ekstrasi
Sebanyak  250  gram  serbuk  dimasukkan kedalam  wadah  dan  dimaserasi  dengan  etanol 96%    sebanyak  750  mL  sampai  terendam, disimpan  sambil  sesekali  diaduk  dan  ditutup dengan almuniumfoil. Setelah dimaserasi selama 5 hari, larutan tersebut disaring menggunakan kertas saring yang kemudian dimasukkan kedalam gelas Erlenmeyer  untuk  dipisahkan  residu  dari  filtrat dan dihasilkan filtrat 1 dan residu 1. Residu yang ada,  kemudian  ditambahkan  lagi  etanol  96% sebanyak 500  mL, ditutup dengan aluminium foil , dan  dibiarkan  selama  3  hari  sambil  sesekali diaduk. Setelah 2 hari, sampel disaring menggunakan kertas saring sehingga menghasilkan filtrat 2 dan residu 2. Filtrat 1 dan 2 dicampur  menjadi  satu,  kemudian  dikeringkan menggunakan  oven  selama  24  jam  pada  suhu 40 o C.

## Sterilisasi Alat yang Digunakan
Alat-alat  gelas  yang  digunakan  dalam pengujian terlebih dahulu disterilkan.Proses sterilisasi  alat-alat  gelas  menggunakan autoclave pada suhu 121 o C tekanan 15 psi atau sekitar 1 atm selama 15 menit.

## Pembuatan Media Bakteri
1. Pembuatan Media Agar Miring
Nutrient  Agar  (NA)  ditimbang  sebanyak 2.8  gram  diencerkan  dalam  100  mL  aquades menggunakan erlenmeyer. Media tersebut disterilkan  menggunakan autoklaf pada  suhu 121 o C  selama  15  menit,  media  yang  telah disterilkan, didinginkan kemudian diambil Sebanyak 5 mL dituangkan masing-masing pada 3 tabung reaksi steril dan ditutup dengan aluminium foil.  Dibiarkan  pada  suhu  ruangan  selama  ±  30 menit  sampai  media  memadat  pada  kemiringan 30 o .  Media  Agar  miring  digunakan  untuk inokulasi bakteri.
2. Pembuatan Media Dasar
Media dasar dibuat dengan cara ditimbang Nutrient  Agar  (NA)  sebanyak  5.6  g,  lalu dilarutkan  dalam  200  mL  aquades  menggunakan erlenmeyer. Media dihomogenkan dengan menggaduk   (stirrer) di atas penangas air sampai mendidih.  Media  yang  sudah  homogen  ini  di sterilkan dalam autoclav pada suhu 121 o C selama 15  menit.  Media  yang  telah  di  sterilkan, didinginkan  hingga  suhu  ruangan,  media  yang telah disterilkan bila tidak digunakan disimpan di dalam lemari pendingin.

## Pembiakan Bakteri
Bakteri  uji  diambil  dengan  jarum  steril, lalu  ditanamkan  pada  media  agar  miring  dengan cara  menggores.Selanjutnya  diinkubasi  dalam inkubator  pada  suhu  37 o C  selama  24  jam. (Siregar, 2009)
Pembuatan Standar Kekeruhan Larutan (Larutan 0,5 Mc. Farland )
Pembuatan  standar  kekeruhan  0,5  Mc. Farland dibuat dari campuran H 2 SO 4 1% sebanyak 9,95 mL dan larutan BaCl 2 1% sebanyak 0,05 mL. Kemudian dikocok sampai terbentuk larutan yang keruh.  Kekeruhan  ini  dipakai  sebagai  standar kekeruhan  suspensi  bakteri  uji  dan  setara  dengan kepadatan bakteri 10 8 CFU/mL (Sutton, 2011).

## Pembuatan Suspensi Bakteri Uji
Bakteri  uji  yang  telah  diinokulasi diambil  dengan  kawat  steril  lalu  disuspensikan kedalam  tabung  yang  berisi  2  mL  larutan  NaCl 0,9%  hingga  di  peroleh  kekeruhan  yang  sama dengan standar kekeruhan larutan Mc. Farland .

## Pembuatan Kontrol Negatif
Kontrol  negatif  dibuat  dari  CMC  1% dengan  cara:  1  g  serbuk  CMC  dilarutkan  dalam 100  mL  aquades  steril.  Dikocok  sampai  larutan homogen.

## Pembuatan  kontrol  Positif  (Metode  Difusi dengan sumuran)
Kontrol  positif  dibuat  dari  sediaan  obat tablet Ciprofloxacin 500 mg. Tablet Ciprofloxacin digem  rus,  lalu  ditimbang  1  gram  serbuk Ciprofloxacin  dilarutkan  dengan  larutan  CMC dalam  labu  ukur  ukuran  50  mL  sampai  batas    50 μg/50 μl .

## Pembuatan Larutan Uji
Larutan  stok  dengan  konsentrasi  ekstrak 50% b/v dibuat dengan cara ditimbang 5 g ekstrak n-Heksan  biji  langsat  kemudian  dilarutkan  dalam larutan  CMC  1%  hingga  volume  10  mL menggunakan  labu  ukur.  Selanjutnya  dibuat larutan  uji  dalam  berbagai  konsentrasi  dengan cara sebagai berikut:
1) Larutan uji 10% v/v dibuat dengan cara dipipet 2  mL  larutan  stok  kemudian  ditambahkan  8 mL larutan CMC
2) Larutan uji 20% v/v dibuat dengan cara dipipet 4  mL  larutan  stok  kemudian  ditambahkan  6 mL larutan CMC
3) Larutan uji 30% v/v dibuat dengan cara dipipet 6  mL  larutan  stok  kemudian  ditambahkan  4 mL larutan CMC
4) Larutan uji 40% v/v dibuat dengan cara dipipet 8  mL  larutan  stok  kemudian  ditambahkan  2 mL larutan CMC.

## Pengujian Aktivitas Antibakteri

## Metode Sumuran
Media  uji  dibuat  dengan  dengan  2  lapisan media agar,yang pengerjaannya seperti berikut : 1.    Lapisan  dasar  dibuat  dengan  menuangkan masing-masing  10  mL  NA  ke  masing-masing  3 cawan petri, kemudian dibiarkan memadat. 2.    Setelah  memadat,  permukaan  lapisan  dasar ditanam  6  pencadang  baja  yang  diatur  jaraknya agar daerah pengamatan tidak bertumpu. 3.   Suspensi bakteri dicampurkan ke dalam media pembenihan NA.
4.      Selanjutkan  dituangkan  10  mL  NA  pada  tiap cawan  petri  yang  diletakan  pencadang  sebagai lapisan kedua.
5.  Setelah  lapisan  kedua  memadat,  pencadang diangkat  secara  aseptik  menggunakan  pinset  dari masing-masing  cawan  petri,  sehingga  terbentuk sumur-sumur  yang  akan  digunakan  dalam  uji bakteri.
6.    Sumuran  yang  terbentuk  diisi  dengan  larutan kontrol  positif  larutan  ciprofloxacin  dan  kontrol negatif  larutan  CMC  dan  larutan  uji  masing- masing 50 mikroliter 7.    Selanjutnya  semua  media  di  inkubasi  dalam inkubator pada suhu 37 ℃ selama 24 jam.

## Pengamatan Dan Pengukuran
Pengamatan  dilakukan  1x24  jam  masa inkubasi. Daerah pada sekitaran sumuran menunjukan  kepekaan  mikro  terhadap  antibiotic atau  bahan  antimikroba  yang  digunakan  sebagai bahan  uji  yang  dinyatakan  dengan  diameter  zona hambat  atau  zona  bening.  Diameter  zona  hambat diukur dalam satuan millimeter (mm)
menggunakan jangka sorong dengan cara mengukur  jarak  dari  tepi  sumur  uji  ke  batas lingkaran  zona  hambat.  Diameter  zona  hambat tersebut dikategorikan kekuatan daya antibakterinya berdasarkan penggolongan.

## Analisis Data
Diameter zona hambat dari ekstrak Biji duku ( Lansiu.domesticum) disajikan dalam tabel dan gambar. Penggolongan kekuatan antibakteri dari daya hambat yang diperoleh ekstrak Biji duku
( Lansiu.domesticum) digolongkan menurut Davis dan Stout (1971).

## HASIL DAN PEMBAHASAN Ekstraksi
Metode  ekstraksi  yang  dipilih  adalah dengan  maserasi.  Kelebihan  dari    metode  ini yaitu  efektif  untuk  senyawa  yang  tidak  tahan panas, teknik dan peralatan relative sederhana, murah dan mudah di dapat. Serbuk biji  duku  dimaserasi  menggunakan  pelarut etanol  96%  karena  memiliki  titik  didih  yang rendah,  tidak  beracun  dan  tidak  berbahaya, serta  kemampuannya  melarutkan  hampir semua  zat,  baik  yang  bersifat  polar,  semi polar, dan non polar (Pratiwi., 2010).

## Pembiakan Bakteri dan Suspensi bakteri uji
Pembiakan bekteri menggunakan media agar miring, dengan cara ditimbang NA sebanyak 2,8 g dilarutakan dalam 100 mL aquades menggunakan erlenmeyer. Media tersebut disterilkan menggunakan  autoklaf  pada  suhu  121 o C  selama 15  menit,  kemudian  dituangkan    kedalam  tabung reaksi, tabung reaksi dimiringkan dengan kemiringan  30 ℃ dan  dibiarkan  pada  suhu ruangan  selama  ±  30  menit  sampai  media memadat.  Diambil  bakteri  menggunakan  jarum ose  treril  dan  bakteri    digoreskan  di  media  agar miring  yang  ada  ditabung  reaksi  tersebut kemudian tabung reaksi tersebut ditutup menggunakan  almunium  foil  dan  dimasukan kedalam inkubator selama 1x24 jam. Bakteri yang telah  dibiakan  kemudian  diambil  menggunakan jarum  oses  treril  dipindahkan  ke  tabung  reaksi yang  berisi  5  mL  larutan  NaCl  0,9%  hingga  di peroleh  kekeruhan  yang  sama  dengan  standar kekeruhan larutan Mc. Farland. Standar kekeruhan larutan Mc.  Farland menjadi  patokan  bahwa suspensi  bakteri  uji  memiliki  kepadatan  bakteri 10 8 CFU/mL.
Tabel 1. Hasil Pengukuran Daya Hambat
Staphylococus aureus (mm) Perlakuan U1 U2 U3 Rata- rata K(-) 0 0 0 0 K(+) 25 22 25 24 10% 12 12 10 11,3 20% 15 13 12 13,3
30% 14 14 13 13,6 40% 13 11 10 11,3 Tabel 2. Hasil Pengukuran Daya Hambat Escherichia coli (mm) Perlakuan U1 U2 U3 Rata- rata K(-) 0 0 0 0 K(+) 21 20 20 20,3 10% 12 9 9 10 20% 10 9 9 9,3 30% 10 10 11 10,3 40% 14 12 12 12,6
Hasil  penelitian  menunjukan  bahwa  uji antibakteri  ekstrak  biji  duku  memiliki  aktivitas antibakteri terhadap bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia  coli pengamatan  selama 1x24 jam  masa inkubasi dengan dilakukannya 3x pengulangan  terhadapa  bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia  coli aktivitas  yang terbentuk  terlihat  dengan  adanya    zona  hambat (zona bening) disekitaran sumuran.
Kontrol positif menunjukan zona bening atau zona hambatan, pada kedua bakteri Staphylococcus  aureus dan Escherichia  coli. Diameter yang terbentuk terhadap  bakteri Staphylococcus  aureus 24  mm,  dan  terhadap bakteri Escherichia  coli 20,3  mm.  Dimana ciprofloxsacin  merupakan  antibiotik  golongan fluorokuinolon. Dimana fluorokuinolon mempunyai daya antibakteri yang lebih besar dan toksisitas  yang  lebih rendah.  Menurut Jawet et  al (2007),  ciprofloxain  memiliki  efek  antibakteri dengan spectrum luas. Dengan bekerja menghambat  sintesis  asam  nukleat  dimana antibiotik  golongan  ini  dapat  masuk  kedalam  sel dengan  cara  difusi  pasif  melalui  kanal  protein dengan  menghambat  replikasi  DNA  bakteri dengan  cara  mengganggu  kerja  DNA  gyrase selama  pertumbuhan  dan  reproduksi  bakteri (Mycek, 2001).
Kontrol  negatif  yang  digunakan    larutan CMC  menunjukan  bahwa  tidak  ada  zona  bening atau  zona  hambatan  disekitar  area  sumuran  yang ditumbuhi  bakteri,  yang  berarti  tidak  adanya aktivitas antibakteri terhadap bakteri Staphylococcus  aureus dan Escherichia coli.  Hal ini disebabkan karena CMC berfungsi mengetahui
ada tidaknya pengaruh pelarut terhadap pertumbuhan  bakteri  sehingga  dapat  diketahui bahwa  yang  mempunyai  aktivitas  antibakteri adalah zat uji bukan pelarut.
Hasil  pengamatan  aktivitas  antibakeri  pada bakteri Staphylococcus aureus dengan konsentrasi  10%,  20%  ,  30%,  40%.  Rata-rata diameter  zona  beningnya  11,3mm,  13,3mm, 13,6mm, 11,3mm. Berdasarkan T abel 1. Menunjukan  bahwa  konsentrasi  yang  memiliki zona  hambat  kuat  adalah  konsentrsi  30%,  dan 20%  sedangkan  zona  hambat  lemah  adalah konsentrasin10%,  dan  40%.  Menurut  Manik (2014),  Aktivitas  antibakteri  tergantung  pada beberapa faktor yaitu kosentrasi ekstrak, kandungan  senyawa  antibakteri,  daya  difusi ekstrak  dan  jenis  bakteri  yang  dihambat.  Hasil penelitian  menunjukan  semakin  tinggi  kosentrasi ekstrak,  semakin  kecil  pertumbuhan  bakteri StaphylococcuStaphylococcus  aureus sehingga keduanya  memiliki  hubungan  yang  berbanding lurus.
Hasil penguji aktivitas antibakteri terhadap  bakteri Escherichia  coli dengan konsentrasi  10%,  20%,  30%,  40%.  Rata-rata diameter zona beningnya 10mm, 9,3mm, 10,3mm, 12,6mm.  Dapat  dilihat  pada T abel  2.  Yang menunjukan  bahwa  ekstrak  biji  duku  memiliki zona  hambat  pertumbuhan  bakteri  paling  kuat pada Escherichia  coli yaitu  40%  dengan  zona hambat 12,6mm Menurut Ajizah (2004), kemampuan  suatu  bahan  antimikroba  dalam meniadakan  kemampuan  hidup  mikroogranisme tergantung  pada  kosntrasi  dan  jenis  bahan antimikroba itu sendiri. Semakin tinggi kosentrasi ekstrak  yang  diberikan  maka  semakin  besar  pula daya  hambat  yang  ditimbulkan,  karena  pada kosentrasi  yang  lebih  besar  semakin  banyak  zat antibakteri yang terkandung di dalam ekstrak. Pertumbuhan  bakteri Staphylococus  aureus dan bakteri Escherichia coli yang terhambat dapat disebabkan  oleh  penghambatan  terhadap  sintesis dinding  sel  namun,  daya  hambat  pada  bakteri Staphylococus  aureus (24  mm)  lebih  besar dibandingkan  dengan  bakteri Escherichia  coli (20,3mm). Hal ini disebabkan karena Staphylococcus  aureus  dan  Eschericia  coli berasal  dari  golongan  bakteri  yang  berbeda  yaitu bakteri Staphylococcus  aureus sebagai  Gram positif dan bakteri Escherichia coli sebagai Gram negatif Poetry et al , (2019).
Hudaya  (2010)  menyatakan  bahwa  jenis bakteri Gram positif memiliki struktur dinding sel yang  lebih  sederhana  dibandingkan  dengan
bakteri  Gram  negatif.  Respon  yang  berbeda  dari dua  golongan  bakteri  terhadap  ekstrak  biji  buah duku  ( Lansium  domesticum )  disebabkan  karena adanya  kepekaan  yang  berbeda  antara  bakteri Gram  negatif  dan  bakteri  Gram  positif.  Pelezar dan  Chan  (1986)  menyatakan  bahwa  sel  bakteri Gram  negatif  mempunyai  struktur  yang  berlapis- lapis  serta  kandungan  lemak  yang  relatif  lebih tinggi  (11-12%),  sehingga  lebih  tahan  terhadap perubahan  lingkungan  yang  disebabkan  oleh bahan  kimia.  Sedangkan  jenis  bakteri  Gram positif  secara  umum  mempunyai  struktur  90% dimana  dinding  selnya  terdiri  dari  lapisan peptidoglikan  sedangkan  lapisan  lainnya  adalah asam  teikoat  (Fardiaz,  1989).  Hal  inilah  yang diduga  mengakibatkan  dinding  sel  bakteri  Gram positif  mudah  dirusak  oleh  senyawa  antibakteri dari ekstrak biji duku  pada bakteri Gram negatif Madigan et  al (2003).    Menyatakan  bahwa terbentuknya zona hambat sangat tergantung oleh jumlah  bahan  antibakteri  yang  diteteskan  ke lobang sumuran, daya larut antibakteri tersebut ke media, koefisien difusi, dan efektivitas antibakteri tersebut. Konsentrasi ekstrak biji buah duku yang semakin  meningkat  memberikan  daya  hambat yang  semakin  besar  pula  karena  semakin banyaknya  ekstrak  yang  bersifat  antibakteri terakumulasi  pada  media  tumbuh  sehingga semakin  dapat  mengganggu  proses  pertumbuhan bakteri  uji.  Penghambatan  pertumbuhan  bakteri Staphylococus  aureus dan Escherichia  coli bakteri  akibat  pemecahan  dinding  sel  bakteri dapat  disebabkan  oleh  senyawa  aktif  antibakteri yang  terkandung  dalam  ekstrak  biji  buah  duku. Hal  ini  sesuai  dengan  penelitian  yang  dilakukan oleh    Josepin  P  Konda;  (2020)  Hasil  pengujian yang telah dilakukan menunjukkan bahwa ekstrak biji duku memiliki kandungan metabolit  sekunder berupa  alkaloid, flavonoid, tanin, triterpenoid dan saponin.

## KESIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian yang diperoleh, maka dapat disimpulkan bahwa ekstrak biji buah duku memiliki aktivitas antibakteri pada setiap  konsentrasi  pada  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli

## SARAN
Perlu  dilakukan  penelitian  lebih  lanjut tentang  pengujian  aktivitas  antibakteri  dengan metode difusi cakram untuk membandingkan hasil dengan penelitian ini

## DAFTAR PUSTAKA
Ajizah, A. 2004. Sensitivitas Salmonella thypimurium Terhadap  Ekstrak  Daun Psidium Guajav L. Bioscientiae 1( 1 ).
Hanum,  L.,  Kasiamdari,  R.  S.,  Santosa,  & Rugayah. (2013). The Phylogenetic Relationship Among Varieties of Lansium domesticum  Correa  Based  on  ITS  rDNA
Sequences . Indonesia
Journal of Biotechnology, 18(2), 123-132. Hudaya,  A.  2010.  Uji antioksidan  dan  antibakteri ekstrak air bunga kecombrang
(Etlingeraelatior) sebagai pangan fungsional terhadap Staphylococcus aureus  dan  Escherichia  coli. [Skripsi] Fakultas Sains dan Teknologi Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah, Jakarta. Josepin  P  Konda,2020.  Aktivitas  Antioksidan Ekstrak  Metanol  Biji  Langsat (Lansium domesticum  var.  pubescens) dan  Duku (Lansium  domesticum  var.  domesticum) dengan  Metode  DPPH.  Jurnal  Ilmiah Sains Vol . 20(2):113-121
Loekitowati,  H.P.  dan  Hermansjah.  2000.  Studi pemanfaatan biji duku (Lansium domesticum) untuk  obat  diare  secara  in vitro. Jurnal Penelitian Sains. 7: 41-48.
Mayanti,  T.,  S.  Soidah,  W.D.  Natawigena,  U.
Supratman,  dan  R.  Tjokronegoro.  2007. Antibacterial  terpenoid  from  the  bark  of Lansium  domesticum  Corr .  Kokossan (Meliaceae). [skripsi] fakultas Mipa, Surabaya. Pelczar,  M.  J.  dan  E.  C.  S.  Chan.  1988.  Dasar– dasar mikrobiologi [ Disertasi].
Universitas Indonesia Press. Jakarta
Pratiwi, E. 2010 . Perbandingan Metode Maserasi,
Remaserasi,  Perkolasi  Dan  Reperkolasi Dalam Ekstraksi Senyawa Aktif Andrographolide Dari Tanaman Sambiloto (Andrographis paniculata Nee). [Skripsi]. Fakultas Teknologi

## Pertanian, Bogor.
Saewan,  N.,  J.D.  Sutherland  and  K. Chantrapromma.  2006. Antimalarial tetranorterpenoids  from    the  seeds  of Lansium  domesticum  Corr .  Jurnal
Ilmiah Farmasi. 67: 2288-2293.
Wijaya,  A.  C.  M.  2017.  Aktivitas  Antibakteri
Esktrak Daun Duku (Lansium
Domesticum  Corr  Var  Duku  Hasskl)
Terhadap Staphylococcus  Aureus Dan
Pseudomonas Aeruginosa . [Skripsi]
Universitas Atma Jaya Yogyakarta. Yulita KS. (2011). Genetic Variations of Lansium domesticum  Corr.  Accessions  from  Java, Sumatra  and  Ceram  Based  on  Random Amplified  Polymorphic  DNFingerprints. Biodiversitas, 12(3), 125-130.