## Efek Formulasi Tepung Kedelai dalam Ransum Terhadap Perlukaan Mukosa
Serta Perubahan Jumlah Sel Goblet Sekum Ayam Pedaging yang Terpapar Coccidia
The Effect of Soybean FlourFormulationDietary on Cecal Mucosa and the Number of Goblet Cells of Coccidia Infected Broiler
Anton Sulistiono 1 , Lucia Tri Suwanti 2 , Hana Eliyani 3 , Indah Norma Triana 4
1) Mahasiswa PPDH, 2) Departemen Parasitologi Veteriner, Peneliti Lembaga Penyakit Tropis,
3) Departemen Anatomi, 4) Departemen Reproduksi Veteriner, Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga, 4) Peneliti Lembaga Penyakit Tropis

## Abstract
The  purpose  of  this  study  is  to  determine  the  effect  of  soybean  flour  in  the  dietary formulation to caecum injury and  changes in the number of goblet  cells  were exposed to  the broiler  caecal  coccidiosis. Twenty  of  broiler  chickens  at  15  days  old  were  randomized  into  4 treatment groups. P0 fed basal and not infected E. tenella . P1 fed basal added with 35% soybean flour and not infected E. tenella .P2 fed basal and infected. P3 fed basal added 35% soy flour and infected.  Data  obtained  from  the  lession  score  analyzed  by  Kruskall  Wallis  test,  while  the goblet cell count data were analyzed by ANOVA. The results showed that soybean meal canned reduce  the  lesion  score  of  the  cecal  (p>0.05)  and  had  no  effect  on  the  increasing  number  of cecal goblet cells (p> 0.05) of coccidia infected broiler.
Key words: soybean meal, goblet cells, a score of injury

## 

## Pendahuluan
Saluran  cerna  merupakan  salah  satu  organ penting  bagi  unggas,  dalam  peran  utamanya sebagai  pengabsorbsi  sari  makanan.  Saluran cerna  berhubungan  langsung  dengan  pakan, sementara  pakan  berasal  dari  luar  tubuh. Keadaan  ini  memungkinkan  saluran  cerna terkontaminasi  oleh  mikroorganisme  patogen maupun  non  patogen  serta  agen  toksik  yang disebabkan oleh rusaknya pakan yang dikonsumsi.  Rangkaian  saluran  cerna,  setelah lambung  akan  diikuti  oleh  intestin  dengan urutan  duodenum,  jejenum,  ilium,  sekum  dan kolon.  Lumen  intestin  dilapisi  oleh  mukus  yang diproduksi oleh sel goblet. Sel goblet dan payer`s patch sebagai  sistem  kekebalan  terhadap mikroorganisme  dan  agen  toksik.  Sel  goblet memproduksi  mukus  yang  disebut mucin untuk melindungimukosa  usus.  Sel  goblet  mampu memberikan  respon  terhadap  keadaanpatologis
dengan  meningkatkan  produksi  dan  komposisi mukus yang dihasilkan. Payer`s patch merupakan sistem  limfoid  pada  saluran  pencernaan  yang berfungsi sebagai sistem imunitas seluler (Mehri, 2010).
Penyakit  protozoa  yang  menyerang  saluran pencernaan  unggas  yang  cukup  diperhitungkan di Indonesia  salah satunya yaitu koksidiosis atau disebut  juga  berak  darah  ayam  (Salfina  dkk, 1992).  Penyakit  ini  disebabkan  oleh Eimeria  sp . Eimeriatenela adalah spesies yang paling patogen dan sangat merugikan peternak unggas (Soulsby, 1988). Unggas yang terinfeksi E. tenela menunjukkan tanda-tanda patologi anatomi yang menonjol  yaitu  adanya  perdarahan  sekum dengan timbulnya perkejuan yang mengeras serta terjadi  pembengkakan  dan  pecahnya  sekum, sehingga bisa mengakibatkan kematian baik pada ayam  ras  maupun  ayam  buras.  Anak  ayam  umur tiga  minggu  sangat  peka  terhadap  koksidiosis,
sedangkan  ayam  umur  diatas  tiga  minggu mengalami  resistensi  akibat  serangan  penyakit sebelumnya (Suprihati dkk., 1996).
Gejala  klinis  koksidiosis  sekum  ditandai kerusakan  hebat  pada  mukosa  sekum.  Berupa perdarahan  yang  berhubungan  erat  dengan dinamika respon kekebalan dan peradangan. Ada tiga  metode  penanganan  koksidiosis,  pertama adalah  mengeliminasi  oosit  dengan  cara  mem- bersihkan  dan  mendesinfeksi  kandang  serta menjaga  sanitasi.  Strategi  kedua  menggunakan obat-obat  anti  koksidia.  Ketiga  dengan  menim- bulkan  kekebalan  melalui  vaksinasi.  Kekebalan tubuh  ayam  dapat  diperoleh  dari  infeksi  alami maupun buatan (Rose and Hesketh, 1991).
Terapi  dengan  antikoksidia  cukup  berhasil tetapi  sejalan  dengan  berkembangnya  resistensi parasit  terhadap  semua  obat  yang  pernah dipergunakan,diperkirakan  cara  konvensional tidak  cukup  berhasil  untuk  kurun  waktu  ke depan.  Antikoksidia  yang  diberikan  selama beberapa  tahun,  berdampak  terhadap  timbulnya galur  yang  tahan  terhadap  obat  (Levine,  1985; Suharno,  1995;  Suprihati  dkk.,  1996).  Selama  ini obat  koksidiostat  yang  beredar  di  peternakan ayam adalah Sulfonamid (Tarmudji, 1984; Utomo, 1996).  Preparat  sulfa  ini  sering  digunakan  pada ayam  bersama  pakan  atau  minumannya.  Setiap produk pabrik mempunyai komposisi bahan aktif dan nama dagang yang berbeda (Tarmudji, 1984).
Penggunaan  antikoksidia  merupakan  alter- natif  yang  sering  dilakukan.  Kerugian  dari  obat- obatan  ini  tidak  hanya  berupa  resistensi  saja, akan  tetapi  juga  menyebabkan  keracunan  pada ayam. Terapi Sulfonamid, berdampak sampingan berupa  kurangnya  nafsu  makan  (anoreksia), diare,  sulit  buang  kotoran  (konstipasi),  muntah, anemia,  leukopenia,  sianosis,  depresi  dan hiperestesia.  Efek  Sulfonamid  pada  ayam  juga dapat  menurunkan  produksi  telur  (Tarmudji, 1984; Suprihati dkk, 1996).
Dampak  negatif  dari  penggunaan  antikoksi- dia kemungkinan besar dapat dieliminasi dengan penggunaan bahan alternatif. Penggunaan bahan alternatif  biologik  yang  dapat  dilakukan  dalam upaya  pemberantasan  dan  pencegahan  koksidi- osis  adalah  tepung  kedelai.  Kedelai  merupakan sumber  protein,  lemak,  vitamin,  mineral  dan  se- rat.  Kedelai  juga  mengandung  β-mannan  yang tinggi.  β-mannan  mampu  merang-sang  sistem imun tidak spesifik atau seluler untuk
memproduksi  makrofag,  monosit  dan  sitokin. Suatu ransum pakan memang telah mengandung bahan  kedelai  yaitu  bungkil  kedelai.  Bungkil kedelai  merupakan  hasil  akhir  pengolahan kedelai  yang  telah  melewati  proses  fermentasi. Bungkil  kedelai  mengandung  lemak  rendah sedangkan pada kedelai utuh mengandung lemak penuh. Kedelai yang digunakan dalam penelitian ini adalah biji kedelai utuh yang digiling menjadi tepung  dan  diberikan  sampai  umur  empat minggu.  β-mannan  yang  terkandung  dalam kedelai  memang  dapat  merangsang  produksi sistem  imun  tidak  spesifik  walaupun  dampak negatif  β-mannan  dapat  menurunkan  produksi telur,  berat  telur  dan  konversi  pakan  (Anderson and  Warnick,  1964).  Umur  peka  ayam  terhadap koksidiosis  adalah  tiga  sampai  empat  minggu sehingga  penambahan  kedelai  dalam  pakan diberikan  sampai  umur  empat  minggu  mampu mencegah penyakit koksidiosis.
Penelitian kali ini, memformulasikan tepung kedelai dalam campuran pakan diharapkan dapat mempengaruhi  imunitas,  yang  tercermin  pada perubahan  sel  goblet  dan  tingkat  perlukaan mukosa sekum ayam. Berdasarkan latar belakang di atas maka diajukan rumusan masalah: Apakah formulasi  ransum  yang  mengandung  tepung kedelai  dapat  mempengaruhi  perlukaan  mukosa serta  jumlah  sel  goblet  sekum  ayam  pedaging yang terpapar koksidiosis?

## Materi dan Metode

## Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian  ini  dilakukan  di  kandang  Pusat Veterinaria  Farma  (PUSVETMA)    Surabaya selama  satu  bulan  pada  bulan  Mei  2011. Pembuatan  preparat  histopatologi  dikerjakan  di laboratirium  Histologi  Fakultas  Kedokteran Universitas Airlangga.

## Hewan Percobaan, Pakan dan Kandang Ayam
Hewan percobaan pada penelitian ini adalah 20  ekor  ayam  pedaging  (broiler)  jantanCP  707 dan berumur 15 hari. Hewan coba diperoleh dari peternakan  ayam  di  kabupaten  Kediri.  Berat badannya berkisar antara 300-390 gram.
Pada  penelitian  ini  digunakan  dua  jenis pakan  diantaranya  adalah  pakan  sebagai  ransum basal  tanpa  koksidiostat  dan  pakan  penelitian yang  merupakan  formulasi  antara  ransum  basal dengan 35% tepung kedelai. Proses pencampuran
dilakukan  di  kandang  penelitian  PUSVETMA Surabaya.  Kedua  jenis  pakan  tersebut  dianalisis kandungan  nutrisinya.  Analisis  nutrisi  pakan dilakukan  di  Laboratorium  Pakan  Ternak Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga.
Kandang  yang  digunakan  pada  penelitian ini  adalah  kandang  tipe litter yang  diberi  alas sekam  dan  dilapisi  koran.  Kerangka  kandang terbuat  dari  kayu  yang  disusun  sedemikian, kemudian ditutup dengan kawat ram.  Kandang disekat  sehingga  menjadi  20  kotak  kandang individu.  Ukuran  kandang  individu  40x50  cm. Duapuluh ekor ayam didistribusikan secara acak pada kandang tersebut.

## Isolat Ookista
Isolat ookista  untuk  infeksi  pada  penelitian ini  diperoleh  dari  perbanyakan  produksi Laboratorium Parasitologi Departemen Parasito- logi  Fakultas  Kedokteran  Hewan  Universitas Airlangga.  Kandungan  satu  vial  isolat  adalah 40.000  ookista/5  ml.  Isolat  diinfeksikan pada  10 ekor  ayam  sebanyak  0,5  ml  tanpa  pengenceran sehingga  setiap  ekor  ayam  diinfeksi  dengan dosis 4000 ookista per ekor.

## Jenis dan Rancangan Penelitian
Penelitian ini termasuk penelitian eksperimental  dengan  pola  RAL.  Setiap  unit perlakuan diulang lima kali. Variabel bebas pada penelitian  ini  adalah  ransum  dengan  campuran tepung  kedelai  dan  ookista  E.  tenella.  Variabel tergantung  berupa  tingkat  perlukaan  mukosa dan  jumlah  sel  goblet  sekum  ayam  yang  di- infeksi  ookista.  Penilaian  terhadap  perlukaan sekum berdasarkan tingkat hemoragi, penebalan sekum  dan  adanya  nodul-nodul  pada  mukosa. Jumlah  sel  goblet  ditentukan  dengan  menghi- tung  banyaknya sel  goblet  yang  aktif.  Sel goblet yang  aktif  akan  membesar  di  bagian  apikal  dan menyempit  di  bagian  basal  (Söderholm and Perdue,  2001).  Bagian  apical  sel  berisi  butiran sekretori disebut “theca”, sedangkan bagian dasar berbentuk  lonjong  memanjang  mirip  dengan batang sebuah piala (Rogers, 1994).

## Pembuatan Tepung Kedelai
Kedelai  kuning  dicuci  bersih  kemudian direbus  pada  suhu  80 0 C  selama  15  menit  agar tidak  merusak  kandungan  zat  seperti  misalnya
β-mannan.  Kedelai  dikeringkan  dengan  cara dioven  dan  diusahakan  kadar  bahan  keringnya mencapai  90%  agar  dapat  diolah  menjadi tepung  kedelai  yang  berkualitas  (Englyst  and Cummings, 1984).

## Perlakuan Terhadap Hewan Coba
Hewan  coba  pada  penelitian  ini  terbagi dalam  empat  perlakuan  berikut  ini:P0:  Ayam diberi  ransum  basal  tanpa  diinfeksi  ookista;  P1: Ayam  diberi  ransum  basal  dengan  tambahan 35%  tepung  kedelai  tanpa  diinfeksi  ookista;  P2: Ayam diberi ransum basal dan diinfeksi ookista; P3: Ayam diberi ransum basal dengan tambahan 35%  tepung  kedelai,  dan  diinfeksi  ookista. Pemberian  pakan  dilakukan  dua  kali  sehari sebanyak  100  g/hari  selama  penelitian.  Air minum  diberikan  secara  ad  libitum  dari  air PDAM.  Infeksi  ookista  sebanyak  4000  dosis dilakukan  pada  hari  ke-21  dengan  cara  peroral menggunakan  spuit  tuberkulin.  Pasca  infeksi hewan  coba  tetap  diberikan  perlakuan  pakan yang  sama.  Pada  hari  ke  enam  pasca  infeksi hewan dikurbankan dengan cara disembelih.

## Pencatatan Skor Perlukaan
Perlukaan mukosa
sekum secara makroskopis  dinilai  sesuai  metode  Johnson  dan Reid  (1972)  dengan  skor:0:  Tidak  tampak perlukaan  pada  dinding  sekum;  +1:  a.  Lumen sekum  berisi  feses  normal,  b.  Tampak  adanya perlukaan berupa ptechiae pada  mukosa dinding sekum; +2: a. Dinding sekum sedikit menebal dan lumen  sekum  berisi  darah,  b.  Didapati  sejumlah ptechiae  pada  mukosa  dinding  sekum;  +3:a. Dinding sekum sangat menebal dan  feses  sedikit atau  tidak  didapatkan,  b.  Didapati  banyak ptechiae;  +4:  Sekum  sangat  membesar,  berisi darah  membeku  atau  perkapuran,  feses  sedikit atau ayam mati.

## Pengamatan Sel Goblet
Organ  yang  diambil  pada  penelitian  ini berupa sekum ayam yang diambil segera setelah ayam  dikurbankan.  Kedua  sekum  dipotong kemudian  dibuka  dan  dibersihkan  dari  feses  di dalamnya.  Sekum  dicuci  dengan  cara  dalirkan air  pada  permukaan  mukosa  sekum.  Sekum difiksasi  pada  kertas  karton  dan  dilekatkan dengan staples. Sekum yang melekat pada kertas kemudian  dimasukkan  dalam  cup  berisi
formalin  selanjutnya  dibuat  preparat  histopa- tologi  dengan  pewarnaan Periodic  Acid  Schiff (PAS).
Pemeriksaan  sel  goblet  dengan  cara mikroskopis dengan perbesaran 400x. Sel goblet tidak  memiliki  inti  sel  dan  berwarna magenta pada  pewarnaan  PAS.  Setiap  preparat  dipilih sebanyak  lima  lapang  pandang  yang  berbeda kemudian  dihitung  semua  sel  goblet  yang tampak  pada  setiap  lapang  pandang  yang diamati.  Data  rata-rata  jumlah  sel  goblet  pada setiap pengamatan ditabulasi pada lampiran.

## Analisis Data
Data  jumlah  sel  goblet  yang  diperoleh dianalisis  dengan  ANOVA  ( Analisis  of  Variance ) dandilanjutkan  dengan  uji  Beda  Nyata  Terkecil apabila terdapat perbedaan yang signifikan. Data skor perlukaan dianalisis dengan  metode Kruskal Wallis dan dilanjutkan dengan uji Mann-Whitney apabila  terdapat  perbedaan  yang  signifikan (Kusriningrum,  2008).  Analisis  data  pada penelitian  ini  menggunakan  program  SPSS  (18) for Windows 7.

## Hasil Penelitian

## Perlukaan Mukosa Sekum
Penilaian  perlukaan  dilakukan  pada  seluruh sampel  secara  makroskopis  dengan  metode Johnson dan Reid. Median perlukaan (skor) pada masing-masing  perlakuan  dapat  dilihat  pada Tabel 1.
Tabel  1. Median  Perlukaan  Sekum  (Skor)  Ayam yang Terpapar Koksidiosis oleh Pengaruh Tepung Kedelai. Perlakuan Median P0 0,00 a P1 0,00 a P2 2,00 b P3 2,00 b
a,b Superskrip  yang  berbeda  pada  baris  yang berbeda  menunjukkan  perbedaan  yang  nyata (p<0,05).
Berdasarkan hasil analisis statistik dengan uji Kruskall  Wallis menunjukkan  bahwa  pemberian formulasi  pakan  mengandung  tepung  kedelai memberikan  pengaruh  yang  berbeda  nyata diantara  kelompok  perlakuan  (p<0,05).  Pada  uji Mann-Whitney didapatkan  P0  dan  P1  berbeda
nyata  dengan  P3  (p<0,05.).  P2  dengan  P3  tidak berbeda nyata (p>0,05).
Perbedaan  perlakuan  penambahan  tepung kedelai  maupun  infeksi  ookista  pada  perlukaan mukosa sekum dapat dilihat pada Gambar 1.
Gambar  1. Grafik  median  skor  perlukaan  dari semua perlakuan.

## Jumlah Sel Goblet
Penghitungan jumlah sel goblet  pada semua perlakuan  kelompok  kontrol  maupun  perlakuan dengan menghitung lima kali lapangan pandang. Rata-rata  jumlah  sel  goblet  aktif    pada  masing- masing perlakuan dapat dilihat pada Tabel2.
Berdasarkan uji Anova dengan taraf signifikan  5%  menunjukkan  tidak  terdapat perbedaan  yang  signifikan  antara  jumlah  sel goblet  pada  sekum  ayam  (p>0,05).  Hasil penelitian  menunjukkan  bahwa  ransum  yang mengandung  tepung  kedelai  tidak  berpengaruh terhadap  jumlah  sel  goblet  pada  sekum  ayam (p>0,05).
Tabel  2. Efek  Formulasi  Tepung  Kedelai  dalam Ransum  terhadap  Rata-rata  Jumlah  Sel  Goblet
Sekum Ayamyang Diinfeksi Ookista Perlakuan X + SD P0 15,32 ± 6,22 P1 18,36 ± 7,98 P2 20,64 ± 10,71 P3 19,16 ± 7,51
Rata-rata    jumlah  sel  goblet  pada  sekum ayam  tidak  diinfeksi  dan  tidak  ditambah  tepung kedelai  (P0)  paling  rendah  diantara  perlakuan
S k o r P er lu k aa n Perlakua n
yang  lain  yaitu  15,320.  Sel  goblet  pada  sekum ayam  tidak  diinfeksi  dengan  penambahan  35% kedelai  dalam  pakan  (P1)  yaitu  18,360,  ayam diinfeksi tidak ditambah kedelai (P2) yaitu 20,640 namun terjadi penurunan jumlah sel goblet pada perlakuan  infeksi  dan  penambahan  tepung kedelai 35% dalam pakan yaitu 19, 160 (P3).
Perbedaan  jumlah  sel  goblet  aktif  di  sekum ayam perlakuan dapat  dilihat pada Gambar 2.

## Pembahasan
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang  diperoleh maka  berikut  ini  diuraikan  pengaruh  formulasi tepung  kedelai  terhadap  variabel  pengamatan yaitu  skor  perlukaan  dan  jumlah  sel  goblet  pada sekum.  Ransum  yang  mengandung  kedelai
diharapkan  dapat  meningkatkan  imunitas  ayam karena  di  dalam  kedelai  terdapat  berbagai  zat yang  bermanfaat  diantaranya  adalah  β-mannan. β-mannan dalam ransum pakan dapat merangsang imun seluler ayam sehingga meningkatkan  proliferasi  makrofag  dan  monosit dan produksi sitokin (Peng et al ., 1991; Zhang and Tizzard, 1996; Ross, 2002).

## Skor Perlukaan Sekum
Berdasarkan  uji  K ruskall  Wallis diperoleh hasil  bahwa  penambahan  35%  tepung  kedelai dalam pakan menunjukkan perbedaan yang nyata (p<0,05)  terhadap  kontrol,  pada  uji Mann- Whitney diketahui.
.
Gambar  2. Sel  Goblet  (ditunjuk  panah)  pada  sekum  dengan  pewarnaan  PAS  pada  seluruh  perlakuan. Perbesaran 400x.
P0 P2 P3 P1 Perlakuan
bahwa  P0  dan  P1  berbeda  nyata  dengan  P3.  P2 dengan  P3  tidak  berbeda  nyata.  Hasil  penelitian ini  menunjukkan  bahwa  pakan  basal  yang ditambah  35%  tepung  kedelai  tidak  dapat mengurangi perlukaan mukosa sekum ayam.
Skor  perlukaan  mukosa  pada  penelitian  ini mulai  dari  0  sampai  +4  yang  berarti  :  0:  Tidak tampak  perlukaan  pada  dinding  sekum;  +1: Lumen  sekum  berisi  feses  normal;  +2:    Dinding sekum  sedikit  menebal,  lumen  sekum  berisi darah  dan  didapati  sejumlah  ptechiae  pada mukosa  dinding  sekum;  +3:  Dinding  sekum sangat  menebal,  feses  sedikit  atau  tidak didapatkan  dan  didapati  banyak  ptechiae;  +4: Sekum  sangat  membesar,  berisi  darah  membeku atau  perkapuran,  feses  sedikit  atau  ayam  mati. Pada  penelitian  ini  hasil  analisis  statistik  skor perlukaan  diketahui  hanya  mencapai tingkat  +2 pada P2 dan P3 menunjukkan bahwa baik pakan basal  maupun  pakan  penelitian  berpengaruh sama  terhadap  perlukaan.  Hal  ini  mungkin disebabkan  β-mannan  yang  terkandung  dalam kedelai  banyak  yang  rusak  akibat  proses perebusan  untuk  menghilangkan off  flavour pada kedelai. Pada penelitian ini kedelai direbus pada  suhu  80 0 C  selama  15  menit  sedangkan  β- mannan  atau  golongan  polisakarida  dapat dihilangkan pada pemanasan 72 0 C sampai 80 0 C selama  30  menit.Mungkin  juga  disebabkan kualitas  kedelai  yang  kurang  baik  karena  jenis kedelai,  asal  kedelai  dan  kedelai  yang  dikupas atau  tidak,  mempunyai  jumlah  β-mannan  yang berbeda (Hsiao et al., 2006). β-mannan  mampu  mengurangi  perlukaan dengan  merangsang  imunitas  seluler  untuk meningkatkan proliferasi makrofag dan monosit dan  produksi  sitokin.  Selain  itu  sel  dendritik pada usus juga aktif sehingga dapat berinteraksi dengan sel T maupun sel B untuk pembentukan respon  adaptive  imun  (Baratawidjaja,  2000;  Van kooyk and Geijtenbeek, 2003). Menurut Rammamoorthy et al., (1996) menyebutkan bahwa Acemannan merupakan polisakarida yang terkandung  dalam  tanaman  lidah  buaya  mampu merangsang  imunitas  hewan  sehingga  mening- katkan proliferasi makrofag  dan sitokin. Mannan dari  kedelai  berbeda  dengan  mannan  pada  lidah buaya  sehingga  tidak  mempengaruhi  kekebalan pada ayam terhadap infeksi koksidiosis.
Perlukaan  sekum  disebabkan  oleh  pecahnya skizon  yang  terdapat  dalam  lamina  propria.
Perlukaan  semakin  parah  apabila  imunitas  dari ayam sendiri lemah. Reid et al ., (1984) dan Levine (1995)  menyebutkan  bahwa  skizon  generasi  I menghasilkan  +  900  merozoit  generasi  I.  Skizon generasi  II  menghasilkan  sekitar  200-350 merozoit  generasi  II,  sedangkan  skizon  generasi III  menghasilkan  sekitar  4-30  merozoit  generasi III.  Ayam  dikurbankan  hari  ke-6  pasca  infeksi. Perlukaan  sekum  terparah  pada  fase  skizon generasi  II  yaitu  hari  ke-5.  Hasil  penelitian disimpulkan  bahwa  penambahan  tepung  kedelai dalam  ransum  pakan  tidak  dapat  mengurangi perlukaan  (skor)  sekum  ayam  pedaging  yang terpapar koksidiosis.

## Jumlah Sel Goblet
Berdasarkan analisis dengan Anova menunjukkan  bahwa  jumlah  sel  goblet  tidak terdapat perbedaan yang signifikan. Jumlah rata- rata sel goblet dari masing-masing perlakuan  P0, P1,  P2  dan  P3  adalah  15,32;  18,36;  20,64  dan  19,16 (Tabel  4.2.).  Hal  ini  kemungkinan  disebabkan oleh  β-mannan  dalam  kedelai  tidak  dapat merangsang  imunitas  pada  ayam.  β-mannan merupakan  polisakarida  yang  terdiri  dari  unit mannosa . Ransum yang mengandung 35% tepung kedelai  seharusnya  terdapat  β-mannan  0,44% namun  dalam  proses  pembuatan  tepung  yang melalui perebusan diduga menurunkan β-mannan yang terkandung (Hsiao et al., 2006). β-mannan  mampu  merangsang  imunitas ayam  melalui  sistem  imun  seluler  dan  sel denditik yang terdapat apa sekum akan  aktif dan bermigrasi ke sistem limfoid untuk mengaktifkan sel  T  dan  sel  B  sehingga  terbentuk  antibodi. Menurut  Walker et  al ,  (1977)  yang  dikutip  oleh Suwanti et  al, (2006),  serum  antibodi  diketahui merangsang  sekresi  sel  goblet.  Kemungkinan lain,  komplek  imun  mengaktivasi  sel-sel  lain  di lamina  propria  untuk  memproduksi  atau mengeluarkan faktor stimulasi sel goblet.
Respon  peningkatan  sekresi  sel  goblet  pada sekum  diawali  oleh  adanya  agen  toksik  atau benda  asing  seperti  bakteri,  virus  dan  parasit. Pada  kondisi  demikian  mukosa  akan  mudah teriritasi sehingga secara spontan sel goblet aktif sebagai  penghasil  musin  yang  berperan  penting pada  system  pertahanan  pertama  usus  akan meningkat  jumlahnya.  Pertahanan  pertama  atau first  barrier  function bekerja  secara  spontan  dan tidak spesifik (Söderholm and Perdue, 2001).
Peningkatan jumlah sel goblet aktif pada hal ini  dapat  diperkuat  oleh  penelitian  terdahulu yang  menyebutkan  bahwa  peningkatan  jumlah sel  goblet  adalah  melalui  mekanisme  hiper plastik  dan  meta  plastik,  diduga  awal  hiper sekresimusin pada epitel termasuk jumlah lendir (mucus)  yang  berlebihan  dan  peningkatan jumlah  sel  penghasil  musin  dipicu  oleh  mRNA (Dizon et  al .,  2009).  Menurut  penelitian  yang dilakukan  oleh  Haberl et  al .,  (1998),  system  saraf pusat  mengatur  fungsi  usus  melalui  interaksi yang kompleks antara system saraf dan kekebalan tubuh  enteric,  mediator  pengaktifan  pertahanan yang  dilepaskan  kedalam  lumen  usus  adalah Prostaglandin D2. Kesimpulan  dari penelitian  ini bahwa ransum yang mengandung tepung kedelai tidak  dapat  meningkatkan  jumlah  sel  goblet sekum ayam pedaging yang terpapar koksidiosis.

## Kesimpulan
Berdasarkan  penelitian  yang  dilakukan dapat  diambil  kesimpulan  yaitu:Formulasi ransum  yang  mengandung tepung kedelai tidak dapat  mengurangi  perlukaan  mukosa  (skor) sekum  serta  tidak  dapat  meningkatkan  jumlah sel  goblet  pada  sekum  ayam  pedaging  yang terpapar koksidiosis.

## Daftar Pustaka
Abbas  A.  K.,  A.  H.  Litchtman,  and  J.  S.  Pober. 2000.  Celluler  and  Molleculer  Immunology.
4 th Ed. Saunders Company. Philadelphia.
Amrullah, IK. 2004. NutrisiAyam Broiler. LembagaSatuGunungbudi, Bogor.
Anderson, J. O., and R. E. Warnick. 1964. Value of Enzyme  Supplements  in  Ration  Containing Certain Legume  Seed Meals or Gums.  Poult. Sci. 43:1091-1097.
Anggorodi,  R.  1985.  Kemajuan  Mutakhir  dalam
Makanan Ternak Unggas. Universitas
Indonesia. Jakarta. Baratawidjaja,  K.  G.  2000.  Immunologi  Dasar. Balai penerbit FK UI. Jakarta. Bowen, R. 1998. Goblet Cell.http://www.vivo.colostate.edu. [9 Desember 2009] Charoen  Pokphand  Indonesia.  2006. Manual Broiler Manajemen CP 707 . Charoen Pokphand Indonesia, Jakarta.
Dizon,  D.,  F.  Zhao,  R.  Edwars,  K.  Afrasiabi,  R. Jennifer,  Mastroianni,  M.  Gefman,  J.  O. André,  B.  Andersen  and  S.  M.  Lipkin.  2009. Disruption  of  Paneth  and  Goblet  Cell Homeostasis  and  Increased  Endoplasmic Reticulum Stress in Agr2−/− Mice.
Departement  of  Pathology  and  Laboratory Medicine.University of California. Irvine.
Ensminger.  1980. Feed  Nutrition  Complete .  The Ensminger  Publishing  Company,  Clovis, California.
Gordon  and  Jordan.  1982.  Poultry  Disease.  2 nd Edition. ELBS. Bailliere. Tyndall. London. Haberl,  C.,  L.,  A.Hültner,  Flügel,  M.  Falk,  S. Geuenich,  W.  Wilmanns  and  C.  Denzlinger. 1998.  Release  Prostaglandin  D2:  Importance of Metabolite Formation for Antiproliferative Activity. MedizinischeKlinik III 7(2): 79-84.
Hsiao,  H.-Y.,  D.  M.  Anderson,  and  N.  M.  Dale. 2006.  Level  of  β-Mannan  in  Soybean  Meal. Poult. Sc. 85: 1430-1432.
Jarrett,  E.  E.  E.  and  H.  R.  P.Miller.  1982. Production  and  Activities  of  Ig  E  in HelminthInfection.  Progress  in  Allergy  31: 178-233.
Joklik, W. K., H. P. Willet, and D. B. Amos. 1984. Microbiology, 18 th Edition. Appleton Century Crofts. London. 233-249.
Kartasujana,  R.  dan  E.  Suprijatna.  2005. ManajemenTernakUnggas .  PenebarSwadaya, Jakarta.
Koeswara.  1995.  TeknologiPengolahanKedelai. PustakaSinarHarapan. Jakarta. Hal.40-45.
Kraehenbuhl,  J.-P.,  and  M.  Corbett.  2004. Keeping  the  GutMicroflora  at  Bay.  Science 303:1624-1625.
Kusriningrum  R.S.  2008.  PerancanganPercobaan. Airlangga University Press. Surabaya.
Levine,  N.D.  1985.  Veterinary  Protozoology.Iowa State University Press. Ames. 130-188.
Levine,  N.D.  1995.  ProtozoologiVeteriner.  Gajah Mada University Press.Yogyakarta.
Lillehoj,  H.  S.  1998.  Role  of  T  Lymphocytes  and Cytokines in Coccidiosis. Int. J. Parasitol. 28; 1071-1081.
Long,  P.  L.,  J.  Johnson  and  R.  D.  Wyatt.  1980. Eimeria  tenella :  Clinical  Effects  in  Partially Immune  and  Susceptible  Chickens.  Poult. Sci. 59: 2221-2224.
Mehri.  M.,  M.  Adibmoradi,  A.  Samie  and  M. Shivazad.  2010.  Effects  of  β-Mannanase  on Broiler  Performance,  Gut  Morphology  and Immune  System.  Af.  J.  Biotechnol.  9(37).
6221-6228. Miller,  H.  R.  P.  1984.  The  Protective  Mucosal Response Against Gastrointestinal Nematodes  in  Ruminants  and  Laboratory Animals.  Vet.  Immunol.  Immunopathol.  6: 167-259.
National Research Council  (NRC). 1994. Nutrient Requirements of poultry .9th ed. Washington, D.C.: National Academy ress.
Ozeretskovskaia,  N.  N.  2000.  The  Organ
Pathology  in  The  Acute  Stage  of  Tissue Helminthiases:  The  Role  of  Eosinophilia  of The Blood andTissues, Blood Immunoglobulins  E  and  G4  and  Immune Responses-Inducing  Faktor.  Med  Parasitol. 95(3):281-5.
Peng, S. Y., J., G. Norman,Gurtin, D. Corrier, H. R. McDaniel,  and  D.  Busbee.  1991.  Decreased Mortality  in  Norman  Murine  Sarcoma  in Mice  Treated  with  the  Immunomodular, Acemannan. Mol. Biother. 3:79-87.
Rasyaf,  M.  1995.  Pengelolaan  Usaha  Peternakan Ayam Pedaging, PT. Gramedia.
Reid,  W.  M.,  P.  L.  Long  and  L.  R.  Mc  Dougald. 1984.  Coccidiosis  in  Chicken.  Disease  of Poultry.  Lowa  State  University  Press.  Ames. 944-983.
Ressang.  1984.  Patologi  Khusus  Veteriner.  Edisi ke-2.  Fakultas  Kedokteran  Hewan.  Institut
Pertanian Bogor. 607.
Rogers,  D.F.  1994.  Airway  Goblet  Cells: Responsive and Adaptable Front-line Defenders.  Dept  of  Thoracic  Medicine National Heart & Lung Institute. London.
Rose, M. E. 1987. The Influence of Age of Host on Infection  with Eimeriatenella J.  Parasitol.  53: 924-929.
Rose, M. E. and P. Hesketh. 1991. Eimeria tenella : Localization  of  The  Sporozoites  in  The Caecum of The Domestic Fowl. Parasitol 102: 317-324.
Ross,  S.  A.,  C.  J.  G.  Duncan,  D.  S.  Pasco,  and  N. Pugh.  2002.  Isolation  of  a  Galactomannan that  Enhances  Macrophage  Activation  from the  Edible  Fungus  Morchella  Esculenta.  J. Agric. Food Chem. 50:5683-5685.
Salfina., A. Hamdandan Tarmudji. 1992. Koksidiosis  Pada  Ayam  Buras  di  Kalimantan Selatan. Penyakit Hewan XXIV (43): 23-25.
Scott, M. L., M. C. Nesheem and R. J. Young. 1982.
Nutrion  of  The  Chicken .  3 rd Ed.,  M.  L.  Scott and Associates. Ithaca, New York.
Söderholm,  J.  D.  and  M.  H.  Perdue.  2001.  Stress and  Intestinal  Barrier  Function.  Intestinal Disease  Research  Program  Mc  Master University. Hamilton.
Soulsby,  E.J.L.  1988.  Helminth,  Arthropods  and Protozoa  of  Domesticated  Animals.  7 th Ed. Printed  in  Great  Britain  by  William  Clowes Ltd. Beales and London.
Suharno,  B.  1995.Teknologi  Inti  Atom.Infovet (26). Jakarta. 6.