## ISSN: 0215-7950
*Alamat penulis korespondensi: Pusat Riset Hortikultura dan Perkebunan, Organisasi Riset Pertanian dan Pangan, Badan Riset dan Inovasi Nasional. Jalan Raya Jakarta- Bogor, Cibinong, Kabupaten Bogor 16915 . Surel: ununtriasih82@yahoo.com

## Volume 18, Nomor 5, September 2022
Halaman 205–212 DOI: 10.14692/jfi.18.5. 205–212

## Karakterisasi Cendawan Rizosfer Kebun Jeruk Organik dan Potensinya dalam Menghambat Pertumbuhan
Botryodiplodia theobromae dan Colletotrichum gloeosporioides
Characterization of Soil Rhizospheric Fungi on Citrus Plantation and Their Potential to Inhibiting the Growth of Botryodiplodia theobromae and Colletotrichum gloeosporioides
Unun Triasih 1 * , Susi Wuryantini 1 , Dina Agustina 2 1 Pusat Riset Hortikultura dan Perkebunan, Organisasi Riset Pertanian dan Pangan, Badan Riset dan Inovasi Nasional, Cibinong 16915
2 Balai Penelitian Tanaman Jeruk dan Buah Subtropika, Batu 65321

## ABSTRAK
Tanah rizosfer di sekitar akar tanaman jeruk mempunyai mikroorganisme salah satunya ialah cendawan.  Tujuan  penelitian  ialah  mengidentifikasi  cendawan  rizosfer  kebun  jeruk  siam  pontianak organik serta potensinya dalam menghambat pertumbuhan cendawan patogen Botryodiplodia theobromae dan Colletotrichum gloeosporioides . Karakterisasi cendawan dilakukan dengan mengevaluasi pertumbuhannya pada suhu, kelembapan, dan tingkat pH yang berbeda, selanjutnya dilakukan uji antagonis terhadap C. gloeosporioides dan B. theobromae . Cendawan yang diperoleh dari rizosfer pertanian organik jeruk siam pontianak ialah Fusarium sp., Fusidium sp., Penicillium sp.,  dan Trichoderma sp. Seluruh  cendawan  rizosfer  tumbuh  optimal  pada  pH  4.5–5.5,  suhu  20–30  ℃,  dan kelembapan 60–80%. Cendawan Penicillium sp. mempunyai kemampuan tertinggi menghambat per- tumbuhan C. gloeosporioides (83.66%), sedangkan Trichoderma sp. mampu menghambat pertumbuhan patogen B. theobromae optimal (92.04%). Studi lebih lanjut diperlukan sebelum pengaplikasian isolat cendawan yang diperoleh sebagai agens biokontrol C. gloeosporioides and B. theobromae.
Kata kunci: daya hambat, in vitro , mekanisme antagonis, morfologi, patogen

## ABSTRACT
The rhizosphere soil around the roots of citrus plants has microorganisms, one of which is a fungus. The aim of this study was to identify the rhizosphere fungi of Siam Pontianak organic citrus gardens and their potential to inhibit the growth of the pathogenic fungi Botryodiplodia theobromae and Colletotrichum gloeosporioides . The characterization of the fungus was carried out by evaluating its growth at different temperatures, humidity and pH levels, then an antagonist test was performed on C. gloeosporioides and B. theobromae . The fungi obtained from the rhizosphere of Siam Pontianak citrus organic farming were Fusarium sp., Fusidium sp., Penicillium sp., Trichoderma sp. All rhizosphere fungi grow optimally at pH 4.5–5.5, temperature 20–30 ℃ and humidity 60–80%. The fungus Penicillium sp.
had the highest ability to inhibit the growth of C. gloeosporioides (83.66%), while Trichoderma sp. able to inhibit the growth of the highest pathogen B. theobromae (92.04%). Further studies are needed before applying the obtained fungal isolates as biocontrol agents for C. gloeosporioides and B. theobromae . Keywords: fungi, inhibition, antagonistic mechanism, morphology, pathogen

## PENDAHULUAN
Jeruk merupakan tanaman hortikultura yang mempunyai nilai ekonomi tinggi. Salah satu kendala dalam budi daya jeruk ialah penyakit diplodia dan antraknosa. Penyakit diplodia merupakan penyakit utama pada tanaman jeruk yang disebabkan oleh cendawan Botryodiplodia theobromae . Penyakit yang dikenal sebagai penyakit blendok ini tersebar secara endemik pada pertanaman jeruk pamelo di Magetan, Jawa Timur pada tahun 1996. Insidensi penyakit blendok pada pertanaman jeruk pamelo mencapai 85% dengan keparahan penyakit 22–37% (Dwiastuti et al . 2016). Penyakit lain pada tanaman jeruk ialah antraknosa yang disebabkan oleh Colletotrichum gloeosporioides . Antraknosa pada jeruk umumnya menginfeksi bagian daun dan buah. Insidensi penyakit ini berkisar antara 26% dan 35% serta keparahan penyakitnya sebesar 17–24% di Desa Kertelangu, Denpasar Timur (Suniti et al . 2016). Demikian juga, produk pascapanen di Desa Pengotan, Kabupaten Bangli mengalami busuk disebabkan C. gloeosporioides (Kadek et al . 2015). Rizosfer merupakan habitat pelbagai mikroorganisme yang bermanfaat untuk pertumbuhan tanaman dan sebagai agens pengendalian hayati. Mikroorganisme rizosfer mempunyai peran untuk pertahanan tanaman terhadap patogen dan hama (Wu et al . 2013). Tanah rizosfer pertanaman jeruk siam pontianak ( Citrus nobilis ) di Kecamatan Kintamani,
Bali mengandung Aspergillus sp., Mucor sp., Penicillium sp., dan Trichoderma sp. (Ristiari et al. 2018). Purwati dan Hamidah (2019) juga melaporkan cendawan yang sama dan bakteri Azotobacteraceae pada rizosfer tanaman jeruk keprok borneo prima. Mucor dan Penicillium berperan sebagai dekomposer serta Trichoderma berperan sebagai agens pengendali hayati. Cendawan rizosfer telah diuji efektivitasnya dalam mengendalikan penyakit antraknosa secara in vitro dan in vivo . Cendawan rizosfer asal tanaman rumput mampu menghambat pertumbuhan C. capsici pada cabai sebesar
66.6-91.7% (Vasanthakumar dan Shivanna 2013), dan cendawan rizosfer cabai juga dapat menghambat pertumbuhan C. gloeosporioides (Nurbailis et al . 2014) . Potensi cendawan rizosfer untuk mengendalikan penyakit diplodia belum pernah dilakukan. Oleh karena itu isolasi dan karakterisasi cendawan yang berasal dari tanah rizosfer tanaman jeruk siam pontianak dan potensinya untuk mengendali- kan penyakit yang disebabkan B. theobromae dan C. gloeosporioides perlu dilakukan.

## BAHAN DAN METODE
Colletotrichum gloeosporioides dan Botryodiplodia theobromae Cendawan C. gloeosporioides dan B. theobromae merupakan koleksi dari Laboratorium Fitopatologi Balitjestro, Kota Batu. Kedua galur cendawan diremajakan pada medium agar-agar dekstrosa kentang (ADK) selama 7 hari.
Isolasi Cendawan dari Tanah Rizosfer Tanaman Jeruk Siam Pontianak Tanah rizosfer diambil di kebun jeruk organik di Tlekung, Batu, Malang secara purposive sampling . Sampel tanah diambil pada empat titik searah mata angin yang ditetapkan berdasarkan keberadaan serasah daun dan kepadatan gulma tidak terlalu rapat. Sampel tanah diambil menggunakan bor steril sampai kedalaman 25 cm dan dikompositkan. Sebanyak 10 g sampel tanah komposit diisolasi cendawannya menggunakan medium ADK yang ditambahi antibiotik teramisin (1 mL L -1 ).  Cendawan yang tumbuh selama 5–7 hari dimurnikan berdasarkan perbedaan morfologi warna koloni dan tekstur.
Identifikasi Cendawan Rizosfer Cendawan rizosfer diamati ciri morfologi berdasarkan makroskopis dan mikroskopis koloni pada medium ADK. Ciri-ciri morfologi struktur reproduksi aseksualnya diamati menggunakan pewarna lactophenol cotton blue secara mikroskopi. Identifikasi dilakukan mengikuti Barnett dan Hunter (1998) serta Watanabe (2002).
Jurnal Fitopatologi Indonesia
Triasih et al.

## Karakterisasi Cendawan Rizosfer
Cendawan rizosfer yang diperoleh dikarakterisasi pertumbuhannya pada suhu, pH, dan kelembapan tertentu. Cendawan ditumbuhkan pada medium ADK. Masing- masing perlakuan diulang tiga kali. Pengamatan dilakukan dengan mengukur diameter koloni setiap cendawan uji setelah masa inkubasi 7 hari. Perlakuan yang diuji ialah suhu: 20, 30, 40 ℃, pH: 4.5, 5.0, 5.5 dan 6.0, dan kelembapan: 60%, 70%, dan 80%. pH medium diatur dengan menambahkan 0.1 M HCl untuk menurunkan pH atau 0.1 M NaOH untuk menaikkan pH.
Uji Antagonisme Cendawan Rizosfer dengan Cendawan Patogen Uji antagonisme dilakukan menggunakan metode biakan ganda. Setiap cendawan rizosfer uji ditumbuhkan berpasangan dengan cendawan patogen ( B. theobromae dan C. gloeosporioides ) pada medium ADK dengan jarak 3 cm dari dinding cawan petri berdiamter 9 cm. Perlakuan kontrol patogen diletakkan di tengah medium ADK tanpa cendawan rizosfer. Uji antagonisme ini diulang sebanyak lima kali. Pengamatan daya hambat cendawan rizosfer dilakukan pada hari ke-7 dengan rumus:
DH = (d1 – d2) d1 × 100%, dengan
DH, daya hambat (%); d1, rata-rata diameter koloni cendawan patogen pada kontrol (mm); dan d2, rata-rata diameter koloni cendawan patogen pada perlakuan uji antagonis (mm). Daya hambat dikelompokkan menjadi 4 kategori, yaitu rendah (1–25%), sedang (26–50%), tinggi (51–75%), dan sangat tinggi (76–100%) ( Živković et al . 2010).
Analisis Data Data yang diperoleh dianalisis dengan Anova dan diuji lanjut menggunakan uji Duncan pada taraf α 5%.

## HASIL
Cendawan Tanah Rizosfer Cendawan tanah rizosfer dari kebun jeruk organik di Tlekung, Batu, Malang yang berhasil dimurnikan ada 4 isolat. Berdasar- kan pada pengamatan makroskopi dan mikroskopi, cendawan tanah rizosfer tersebut diidentifikasi sebagai Fusarium sp., Fusidium sp., Trichoderma sp., dan Penicillium sp. (Gambar 1).
Gambar 1  Cendawan tanah rizosfer dari kebun jeruk organik di Tlekung, Batu, Malang. a, Fusarium sp.; b, Fusidium sp; c, Penicillium sp.; dan d, Trichoderma sp. Kiri, koloni cendawan pada medium ADK dan kanan, struktur reproduksi aseksual.
d a b c
Empat perlakuan suhu umumnya tidak berpengaruh nyata terhadap diameter koloni masing-masing cendawan rizosfer, kecuali pada Trichoderma sp.  (Tabel 1). Empat cendawan rizosfer dapat tumbuh pada suhu antara 20–50 °C. Fusidium sp. dan Trichoderma sp. tumbuh optimal pada suhu 30 ℃.
Fusarium sp ., Fusidium sp ., Penicillium sp ., dan Trichoderma sp . hidup pada rentang 4 macam pH uji yang diujikan (pH 4.5–6.0) dengan pertumbuhan yang sama. Fusidium sp . dan Trichoderma sp. tampaknya tumbuh optimal pada pH 6.0 (Tabel 2). Kelembapan 60%, 70%, dan 80% tidak memberikan pengaruh nyata terhadap pertumbuhan diameter koloni cendawan rizosfer. Trichoderma sp. dan Fusarium sp . tumbuh optimal pada kelembapan 70%,
sedangkan Fusidium sp. dan Penicillium sp. tumbuh optimal pada kelembapan 80% (Tabel 3).
Antagonisme Cendawan Rizosfer dengan Cendawan Patogen Cendawan rizosfer mampu menghambat pertumbuhan dua patogen penyebab penyakit diplodia ( B. theobromae ) dan antraknosa ( C. gloeosporioides ) dengan tingkat penghambatan antara 20.66% dan 92.04% (Tabel 4).  Hasil uji menunjukkan bahwa masing-masing cendawan rizosfer menghambat cendawan patogen dengan pola berbeda. Penicillium sp. dan Trichoderma sp.  mempunyai penghambatan sangat tinggi terhadap B. theobromae , demikian juga Penicillium sp. mempunyai penghambatan sangat tinggi terhadap C. gloeosporioides. Sedangkan Fusidium sp. dan Trichoderma sp.
Tabel 3  Diameter koloni cendawan rizosfer pada tiga perlakuan kelembapan
Kelembapan (%)
Diameter (cm) Fusarium sp . Fusidium sp . Penicillium sp . Trichoderma sp . 60 4.3 b 2.8 ab 1.7 a 8.1 c 70 4.3 b 2.2 a 1.7 a 8.3 c 80 3.7 b 3.1 ab 1.8 a 7.6 c
Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji Duncan pada taraf α 5%
Tabel 2  Diameter koloni cendawan rizosfer pada empat perlakuan pH pH
Diameter (cm)
Fusarium sp . Fusidium sp .
Penicillium sp . Trichoderma sp . 4.5 4.3 ab 8.2 cdef 3.2 a 8.4 ef 5.0 4.9 abc 7.9 cdef 2.7 a 8.8 ef 5.5 5.6 abcde 6.8 bcdef 4.3 ab 9.0 f 6.0 7.0 abcd 7.0 bcdef 2.6 a 9.0 f
Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji Duncan pada taraf α 5%
Tabel 1 Diameter koloni cendawan rizosfer pada empat perlakuan suhu Suhu (°C) Diameter (cm) Fusarium sp . Fusidium sp . Penicillium sp . Trichoderma sp . 20 4.5 cd 3.6 abcd 2.7 ab 7.6 e 30 4.7 cd 4.8 cd 2.4 ab 9.0 e 40 4.9 d 3.4 abc 2.1 a 4.9 d 50 2.3 a 3.6 abcd 2.1 a 3.8 bcd
Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji Duncan pada taraf α 5%.
Jurnal Fitopatologi Indonesia
Triasih et al.
dapat berantagonis dengan C. gloeosporioides dengan kategori tinggi, namun Fusidium sp. berantagonis dengan B. theobromae pada kategori rendah. Berbeda dengan cendawan uji lainnya, baik terhadap B. theobromae dan C. gloeosporioides, Fusarium sp. hanya berantagonis dengan kategori rendah (Tabel 4).
Mekanisme antagonisme yang terjadi ialah secara antagonis, sedangkan Trichoderma sp. mengadakan mikoparasitisme pada cendawan patogen. Hifa Trichoderma sp. berdiameter lebih kecil dibandingkan dengan hifa B. theobromae dan C. gloeosporioides . Mekanisme yang terjadi ialah dengan menempel, membelit , dan menembus hifa cendawan patogen sehingga terjadi lisis pada dinding hifa cendawan patogen (Gambar 2). Mekanisme antibiosis ditandai oleh adanya zona bening pada agar-agar cawan. Pengamatan pada Fusarium sp. dan Fusidium sp. menghasilkan mekanisme antagonis antibiosis terhadap B. theobromae dan C. gloeosporioides , tetapi tidak nampak adanya zona bening pada akhir pengamatan.

## PEMBAHASAN
Cendawan rizosfer yang diperoleh dari lahan jeruk siam pontianak ialah Fusarium sp. , Fusidium sp. , Penicillium sp. , dan Trichoderma sp. Trichoderma merupakan salah satu cendawan yang sering ditemukan di tanah rizosfer dengan pertumbuhannya yang cepat. Trichoderma memiliki sekitar 10 000 spesies (Rajesh et al . 2016). Selain Trichoderma, cendawan yang umum ditemukan di tanah rizosfer ialah Aspergillus dan Penicillium . Fusidium sp. yang diisolasi dari tanah rizosfer jeruk siam pontianak jarang dilaporkan. Fusarium ialah salah satu genus cendawan berfilamen yang banyak ditemukan pada tanaman dan tanah, namun jarang ditemukan di pertanaman rizosfer jeruk. Fusarium isolat IJR2 mempunyai ciri koloni awal berwarna putih kemudian berubah menjadi merah muda dan mempunyai cirri mikroskopis kodiofor berupa tangkai yang pendek hifa bersepta 2–3. Menurut Wibowo et al . (2008) sebagian besar isolat anggota genus Tabel 4  Daya hambat cendawan antagonis dengan Botryodiplodia theobromae dan Colletotrichum gloeosporioides
Cendawan antagonis B. theobromae C. gloeosporioides Daya hambat (%) Kategori daya hambat Interaksi Daya hambat (%) Kategori daya hambat Interaksi Fusarium sp. 24.07 a Rendah Antibiosis 20.66 a Rendah Antibiosis Fusidium sp. 22.22 a Rendah Antibiosis 66.72 bc Tinggi Antibiosis Penicillium sp. 81.11 b Sangat tinggi Antibiosis 83.66 c Sangat tinggi Antibiosis Trichoderma sp. 92.04 c Sangat tinggi Miko- parasitisme 63.24 b Tinggi Miko- parasitisme
Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji Duncan pada taraf α 5%
Gambar 2  Mikroparasit Trichoderma sp. pada hifa Botryodiplodia theobromae. a, hifa Trichoderma sp. menempel pada hifa B. theobromae ; b, hifa Trichoderma sp. membelit hifa B. theobromae ; dan c, hifa Trichoderma sp. menembus hifa B. theobromae .
a b c
Fusarium pada medium ADK memiliki koloni yang berwarna putih, kuning, cokelat dan ungu atau merah muda pada bagian pusat koloni serta memiliki miselium seperti kapas. Selain itu, juga memiliki karakteristik berupa hifa yang bersepta dan terdapat dua tipe konidia, mikrokonidia dan makrokonidia. Cendawan ini jarang ditemukan di pertanaman rizosfer jeruk. Karakterisasi suhu, kelembapan dan pH diperlukan untuk mengetahui kondisi yang tepat untuk pertumbuhan cendawan dan perkecambahan spora masing-masing cendawan. Aktivitas cendawan yang hidup di tanah rizosfer akan memengaruhi pertumbuhan tanaman yang selanjutnya akan menentukan produktivitas tanaman jeruk. Spesies Trichoderma tumbuh lebih baik dalam kondisi asam (Shahid et al . 2014). Studi Limón et al . (2004) menunjukkan bahwa pH asam lebih cocok bagi pertumbuhan cendawan daripada pH basa. Beberapa isolat cendawan seperti F. solani, F. oxysporum, dan T. viride bisa tumbuh baik pada pH 5.5 (Verdin et al . 2004). Penicillium dapat tumbuh pada kisaran pH antara 2–9 (Sindhu et al . 2011). Suhu optimum untuk tumbuhnya Trichoderma berbeda-beda setiap spesiesnya. Ada beberapa spesies yang dapat tumbuh pada suhu rendah ada pula yang tumbuh pada suhu cukup tinggi, kisarannya  sekitar  7–41  ℃. Trichoderma yang di kultur dapat tumbuh cepat pada suhu 25–30 ℃, namun pada suhu 35 ℃ cendawan ini tidak dapat tumbuh (Chalimatus 2013). Cendawan rizosfer yang diperoleh dari tanaman jeruk siam diuji antagonismenya terhadap patogen C. gloeosporioides dan B. theobromae . Hasil pengujian antagonis cendawan Trichoderma sp. yang mempunyai potensi tertinggi dalam mengendalikan patogen B. theobromae. Daya antagonis yang tinggi pada Trichoderma sp. diduga karena cendawan ini menghasilkan enzim yang mampu merusak dinding sel patogen dan menghambat pertumbuhan patogen. Dinding sel patogen diduga mengalami lisis akibat adanya aktivitas enzim yang dihasilkan oleh cendawan antagonis. Trichoderma diketahui mampu menghasilkan sejumlah metabolit sekunder berupa alametichin, paracelsin,
dan trichotoksin yang dapat menghancurkan sel kapang dengan cara merusak membran sel (Octriana 2011). T. harzianum mampu mengeluarkan senyawa antibiotik seperti glitoksin dan glioviridin (Alfizar et al. 2013); serta memproduksi enzim hidrolitik (De Marco dan Felix 2002) enzim kitinase dan β 1,3-glukanase (Octriana 2011). Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa Penicillium sp. mempunyai potensi paling baik dalam menghambat pertumbuhan C. gloeosporioides. Cendawan Penicillium sp. menghasilkan senyawa antimikrob yang mampu menghambat pertumbuhan patogen (Makut dan Owolewa 2011). Genus Penicillium juga mampu menghambat pertumbuhan patogen melalui mekanisme kompetisi dan antibiosis (Nurhayati 2011). Trichoderma dan Penicillium bisa menghambat pertumbuhan patogen dengan persentase paling tinggi. Pertumbuhan dua cendawan tersebut lebih cepat daripada patogen sehingga berpotensi sebagai agens hayati.
Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa cendawan rizosfer yang diperoleh dari tanaman jeruk sebanyak empat genus yaitu Fusarium, Fusidium, Penicillium, dan Trichoderma . Cendawan rizosfer Trichoderma mempunyai potensi menghambat pertumbuhan patogen B. theobromae dan C. gloeosporioides secara in vitro.

## DAFTAR PUSTAKA
Alfizar, Marlina, Susanti F. 2013. Kemampuan antagonis Trichoderma sp. terhadap beberapa cendawan patogen in vitro. Jurnal Floratek. 8(1):45–51.
Barnett HL, Hunter BB. 1998. Illustrated Genera of Imperfect Fungi 4th ed . Minnesota (US): American Phytopathologycal Society Press.
Chalimatus HSC. 2013. Efektivitas jamur Trichoderma harzianum dan mikroba kotoran sapi pada pengomposan limbah sludge pabrik kertas [skripsi]. Semarang (ID): Universitas Negeri Semarang.
De Marco JL, Felix CR. 2002. Characterization of a protease produced by a Trichoderma
Jurnal Fitopatologi Indonesia
Triasih et al.
harzianum isolate which controls cocoa plant witches` broom disease. BMC Biochemistry. 3:1–7. DOI: https://doi. org/10.1186/1471-2091-3-3.
Dwiastuti ME, Agustina D, Triasih U. 2016. Keanekaragaman hayati penyakit busuk batang jeruk ( Botryodiplodia theobromae Pat.) di Jawa Timur. Prosiding Seminar Nasional II Kerjasama Prodi Pendidikan Biologi FKIP dengan Pusat Studi Lingkungan dan Kependudukan (PSLK) Universitas Muhammadiyah Malang ; 2016 Mar 26; Malang (ID): Universitas Muhammadiyah Malang. Hlm. 94–109.
Kadek IS, I Made S, I Ketut S. 2015.
Pengendalian penyakit antraknosa ( Colletotrichum gloeosporioides Penz) pada buah jeruk siam ( Citrus nobilis var. microcarpa) dengan menggunakan minyak atsiri cengkeh dan sereh dapur. E-Jurnal Agroekoteknologi Tropika. 4(1):16–24.
Limón MC, Chacón MR, Mejías R, Delgado- Jarana J, Rincón AM, Codón AC, Benítez T. 2004. Increased antifungal and chitinase specific  activities  of Trichoderma harzianum CECT 2413 by addition of a cellulose binding domain. Applied Microbiology Biotechnology. 64(5):675– 685. DOI: https://doi.org/10.1007/s00253- 003-1538-6.
Makut MD, Owolewa OA. 2011. Antibiotic producing fungi present in the soil environment  of  Keffi  Metropolis, Nasarawa State, Nigeria. Trakia Journal of Scinece. 9(2):33–39.
Nurbailis, Martinus, Azniza V. 2014. Keanekaragaman jamur pada rizosfer tanaman cabai sistem konvensional dan organik dan potensinya sebagai agen pengendali hayati Colletotrichum gloeosporioides . Jurnal Hama dan Penyakit Tumbuhan Tropika. 14(1):16–24. DOI: https://doi.org/10.23960/j.hptt.11416-24. Nurhayati D. 2011. Penggunaan cendawan dan bakteri dalam pengendalian penyakit tanaman secara hayati yang ramah lingkungan. Prosiding Seminar Nasional dan Rapat Tahunan Dekan Bidang Ilmu-
ilmu Pertanian BKS-PTN Wilayah Barat ; 2011 Mei 23–25; Palembang (ID): Universitas Sriwijaya. Hlm. 316–321. Octriana L. 2011. Potensi agen hayati dalam menghambat pertumbuhan Phytium sp. secara in vitro . Buletin Plasma Nutfah. 17(2):138–142. DOI: https://doi. org/10.21082/blpn.v17n2.2011.p138-142. Purwati, Hamidah. 2019. Biodiversitas mikrob rizosfer tanaman jeruk keprok Borneo Prima ( Citrus reticulata cv Borneo Prima). Jurnal Agrifarm. 7(2):50–53. DOI: https:// doi.org/10.24903/ajip.v7i2.431.
Rajesh RW, Rahul MS, Ambalal NS. 2016. Trichoderma :  A  significant  fungus  for agriculture and environment. African Journal of Agricultural Research. 11(22):1952–1965. DOI: https://doi. org/10.5897/AJAR2015.10584.
Ristiari NP, Julyasih KS, Suryanti IA. 2019. Isolasi dan identifikasi jamur mikroskopis pada rizosfer tanaman jeruk siam ( Citrus nobilis Lour.) di Kecamatan Kintamani, Bali. Jurnal Pendidikan Biologi Undiksha. 6(1):10–19.
Shahid M, Srivastava M, Pandey S, Singh A, Kumar V, Srivastava Y. 2014. Biocontrol mecanisms by Trichoderma through genomik and proteomik analysisn: a review. African Journal of Microbiology Research. 8(33):3064–3069. DOI: https:// doi.org/10.5897/AJMR2014.6951.
Sindhu R, Suprabha NG, Shashidhar S. 2011. Media engineering for the production of cellulase from Penicillium species (SBSS 30) under solid state fermentation. Biotechnology, Bioinformatics and Bioengineering. 1:343–349.
Suniti NW, Suada IK, Sudarma IM. 2016. Epidemi penyakit antraknosa pada tanaman jeruk nipis [( Citrus aurantifolia (Christm.) Swingle] di Desa Kertalangu, Kecamatan Denpasar Timur. Jurnal Agroekoteknologi Tropika. 5(1):112–122.
Vasanthakumari MM, Shivanna MB. 2013. Biological control of anthracnose of chilli with rhizosphere and rhizoplane fungal isolates from grasses. Archives
of Phytopathology and Plant Protection. 46(14):1641–1666. DOI: https://doi.org/1 0.1080/03235408.2013.771901. Verdin A, Sahraoui AL, Durand R. 2004. Degradation of benzo [a] pyrene by mitosporic fungi and extracellular oxidative enzymes. International Biodeterioration and Biodegradation. 53(2):65– 70. DOI: https://doi.org/10.1016/j. ibiod.2003.12.001.
Watanabe T. 2002.  Pictorial atlas of soil and seed fungi. 2 nd Edition CRC Press LLC. DOI: https://doi.org/10.1201/9781420040821.
Wibowo A, Priyatmojo A, Sutejo MA. 2008.
Identifikasi  morfologi  beberapa  spesies jamur Fusarium . Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia. 14(1):7–13
Wu QS, Zou YN, Huang YM. 2013. The arbuscular mycorrhizal fungus Diversispora  spurca  ameliorates  effects of waterlogging on growth, root system architecture and antioxidant enzyme activities of citrus seedlings. Fungal Ecology. 6(1):37–43. DOI: https://doi. org/10.1016/j.funeco.2012.09.002.
Živković  S,  Stojanović  S,  Ivanović  Ž, Gavrilović  V,  Popović  T,  Balaž  J.  2010. Screening of antagonistic activity of microorganisms against Colletotrichum a c u t a t u m a n d C o l l e t o t r i c h u m gloeosporioides . Archives of Biological Sciences. 62(3):611–623. DOI: https://doi. org/10.2298/ABS1003611Z.