Vol. 08 No. 3, Desember 2017, Hal 147-153 ISSN: 2086-8227

## PENGARUH FUNGI MIKORIZA ARBUSKULA (FMA) DAN MYCORRHIZAL HELPER BACTERIA (MHB) TERHADAP
PERTUMBUHAN JABON ( Anthocepalus cadamba Roxb.)
The Effect of Arbuscula Mycorrhizal Fungi (AMF) and Mycorrhizal Helper Bacteria (MHB) on Growth of Jabon ( Anthocepalus cadamba Roxb. )

## Hutami Indah Pertiwi, Sri Wilarso Budi, dan Arum Sekar Wulandari
Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan IPB

## ABSTRACT
Jabon  ( Anthocepalus  cadamba Roxb.)  is  one  of  the  fast-growing  species  that  naturally  spread  in  some  areas  of Indonesia.  Known  as  well  adapted  to  some  types  of  soil, and  attributes  to  a quite  high  of  economical  prospects  value. Interaction of Arbuscular Mycorrhiza Fungi (AMF) symbiotic involve not only between fungi and plant’s root but also involving supporting organisms (bacteria). This bacteria capable to stimulating the development of mycorrhizal hyphae namely as Mycorrhiza Helper Bacteria (MHB). The aims of this research  was to discover of bacterial isolates that can stimulate the development of AMF in Jabon seedling and to examine the effectiveness of MHB isolate and AMF toward Jabon growth. The experiment was  conducted in Completely Randomized-split splot design with two factors. The main plot  was  AMF  with  two  levels;  without  AMF  (M0)  and  with  AMF  respectively.  Bacteria  as  the  sub-plot  with  19  levels consist of the control (B0), Isolate of Glomus sp with coding B1, B2, B3, B4, B5, B6, B7, B8, B9, B10, B11, B12, B13, B14, B15, B16, B17, and   B18 respectively. Our experiment result showed  that AMF inoculated of Jabon  seedling had significantly  effect  on  root  colonization  and  root  dry  weight.  The  average  of  root  colonization  was  20.2%.  Root  dry weight increased 4.69% compared to control. Bacteria were suspected as MHB has not provided significant results
Key words: arbuscular mycorrhizal fungi, jabon, mycorrhizal helper bacteria

## PENDAHULUAN
Mikoriza  merupakan  suatu  bentuk  hubungan simbiosis  mutualistik  antara  fungi  dengan  perakaran tanaman. Fungi Mikoriza Arbuskula (FMA) merupakan salah  satu  jenis  mikoriza  yang  bersimbiosis  dengan sebagian  besar  tanaman  darat  pada  hampir  semua ekosistem  darat  (Smith  &  Read  2008),  termasuk  pada lahan  masam  (Sasli  &  Ruliansyah 2012).  Asosiasi simbiosis  FMA  memberikan  banyak  manfaat  bagi tanaman. FMA  mampu  membantu  penyerapan  unsur hara  terutama  unsur  hara  P,  membantu  tanaman  untuk dapat  tahan  pada  kondisi  kekeringan  karena  adanya hifa-hifa  FMA  yang  mampu  menembus  pori-pori  tanah dan  memperluas  daerah  penyerapan  air  serta  sebagai proteksi  dari  serangan  patogen  akar  (Brundrett et  al. 1996).
Interaksi simbiosis mikoriza bukan hanya melibatkan  antara  dua  pihak  saja  (fungi  dan  perakaran tanaman)  namun  juga  melibatkan  organisme  terkait (pendukung).  Organisme  yang  terkait  dengan  mikoriza tersebut diketahui saling  mempengaruhi satu sama lain, yang  disebut  sebagai  "mikorizosfer"  (Frey-Klett  & Garbaye  2005).  Mikorizosfer  tersusun  atas  mikoriza, miselium eksternal, dan organisme pendukung (Barea et al. 2005).  Menurut  Garbaye  (1994),  suatu  bakteri  yang mampu  meningkatkan  perkembangan  mikoriza  secara kolektif  disebut  sebagai Mycorrhiza  Helper  Bacteria (MHB). May (2011) melaporkan bahwa terdapat 3 jenis bakteri  ( Bacillus  subtilis , Pseudomonas  diminuta dan Enterobacter  hormaechei )  yang  berpotensi  menjadi
MHB plus .  Bakteri-bakteri  tersebut  ditetapkan  sebagai MHB plus karena  merupakan  bakteri  hasil  isolasi  dari spora  FMA Gigaspora sp.  dan Glomus sp.  (endofit), mampu menstimulir perkembangan hifa FMA, mempunyai kemampuan  menghasilkan enzim  hidrolitik dan  mempunyai  sifat  antagonis  terhadap  patogen  tular tanah.
Setiap  jenis  FMA  mempunyai  asosiasi  dengan bakteri  yang  berbeda-beda.  Marschner  dan  Crowley (1996)  menyatakan  bahwa  setiap  FMA  memiliki  efek yang  berbeda  terhadap  bakteri  dan  populasi  fungi.  Hal ini  berkaitan  dengan  persaingan    spesifik  terhadap substrat pertumbuhan. Budi  & May (2013) menemukan 7 bakteri  yang diisolasi dari  spora Gigaspora sp. dan 5 bakteri dari spora Glomus sp. Selain itu, asosiasi setiap jenis  FMA  dengan  bakteri  juga  memberikan  respon yang  berbeda-beda.  Oleh  karena  itu,  penelitian  tentang isolasi bakteri dari spora FMA dari jenis yang lain perlu dilakukan  dan  mengujinya  kembali.  Brundett et  al. (1996)  menyatakan  bahwa  FMA  memiliki  pengaruh yang berbeda pada setiap jenis tanaman. Untuk  melihat respon  yang  baik  terkait  interaksi  antara  FMA  dan bakteri  yang  ditemukan  serta  untuk  benar-benar meyakinkan  respon  tersebut  maka  perlu  dilakukan pengujian  dengan  menggunakan  jenis  tanaman  lain seperti  tanaman  jabon  ( Anthocepalus  cadamba Roxb.). Jabon  merupakan  salah  satu  jenis  pohon  cepat  tumbuh yang  tersebar  secara  alami  pada  beberapa  wilayah  di Indonesia  (Mansur  &  Tuheteru  2010).  Jabon  dapat dimanfaatkan  sebagai  bahan  baku  kayu  lapis,  papan partikel,  papan  semen,  papan  blok,  pulp  dan  kertas,
kayu  kontruksi  ringan,  bahan  baku  kerajinan,  perahu, batang korek api, batang sumpit dan pensil (Soerianegara  &  Lemmens  1993).  Tujuan  dari penelitian  ini  adalah  ditemukannya  isolat  bakteri  yang dapat  menstimulir  perkembangan  FMA  pada  bibit tanaman  jabon  serta  untuk  menguji  keefektifan  isolat MHB dan FMA terhadap pertumbuhan jabon.

## METODE PENELITIAN

## Waktu dan Lokasi Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  di  Laboratorium  dan Rumah Kaca Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan  Institut  Pertanian  Bogor  dari  bulan  Maret 2016 sampai dengan Maret 2017.

## Prosedur Penelitian

## Isolasi spora FMA dan kolonisasi FMA
Spora  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  yaitu jenis Glomus sp. yang berasal dari SEAMEO BIOTROP yang  merupakan  hasil  perbanyakan  dari  kultur  tunggal. Isolasi  spora  FMA  dilakukan  dengan  metode  tuang saring  dari  Pacioni  (1992)  dan  dilanjutkan  dengan sentrifugasi  dari  Brundrett et  al. (1996).  Spora  yang telah  ditemukan  kemudian  dimasukkan  ke  dalam  botol yang telah diisi aquades steril, masing-masing sebanyak 50  spora  per  botol  dan  disimpan  di  dalam refrigerator sampai  digunakan  (May  2011).  Spora  yang  ditemukan kemudian disterilkan permukaanya menggunakan metode  Budi et  al. (1999).  Setelah  jabon  berumur  12 minggu setelah tanam (MST) tanaman dipanen dan akar diwarnai  menggunakan  teknik  perwarnaan  dari  Clap et al. (1996)  untuk  mengamati  kolonisasi  FMA  pada  akar tanaman.

## Isolasi dan identifikasi bakteri dari spora FMA
Sebanyak  50  spora  FMA  yang  telah  dipisahkan disterilkan permukaannya dengan menggunakan metode Budi et  al. (1999).  Spora  yang  permukaannya  telah disterilkan  tersebut  kemudian  ditempatkan  pada  media nutrient  agar dan  diinkubasi  pada  suhu  30  °C  selama tiga  hari  (May  2011).  Bakteri  kemudian  diisolasi  dan dimurnikan. Setiap koloni tunggal selanjutnya dipindahkan  ke  media  agar  miring  dan  disimpan  pada suhu  4  °C  sampai  digunakan  (Budi et  al. 2012). Identifikasi  koloni  bakteri  berdasarkan  morfologi dilakukan  dengan  pengamatan  pada  warna,  bentuk, tepian dan elevasi bakteri (Hadioetomo 1993).

## Persiapan media perkecambahan  dan media tanam
Media  perkecambahan  yang  digunakan  adalah  pasir yang  sebelumnya  disterilisasi  menggunakan  autoklaf pada  suhu  121  °C  dengan  tekanan  1  atm  selama  30 menit.  Media  kemudian  didinginkan  dan  ditempatkan pada bak perkecambahan. Media tanam yang digunakan adalah  media  tanah  yang  telah  disterilkan  dengan autoklaf pada suhu 121 °C dengan tekanan 1 atm selama 60  menit  kemudian  didiamkan  sampai  dingin.
Selanjutnya  tanah  dimasukkan  ke  dalam polybag berukuran 20 x 15 cm.

## Perkecambahan dan persiapan bibit Jabon
Media  yang  digunakan  untuk  perkecambahan  benih jabon adalah pasir steril. Benih jabon kemudian ditabur di atas media pasir steril  yang telah didinginkan. Benih jabon  yang  telah  berkecambah  dapat  dipindahkan  ke dalam  media  tanam polybag yang  telah  disediakan. Bibit yang digunakan adalah bibit yang sehat, memiliki 2 daun dan tidak terserang hama maupun penyakit.

## Perbanyakan dan pemanenan isolat bakteri
Isolat  bakteri  diperbanyak  dengan  mengisolasi  satu ose  ke  dalam  labu  erlenmeyer  yang  telah  berisi  media cair ( nutrient broth ) dan dikocok selama 24 jam dengan kecepatan  80  rpm.  Pemanenan  sel  bakteri  dilakukan dengan  cara  memisahkan  kultur  bakteri  dari  media dengan  sentrifus  yang  berkecepatan  10000  rpm  selama 1 menit.  Bagian  supernatan  dibuang  sehingga menyisakan  bagian  pelet  sel  bakteri.  Pelet  sel  bakteri kemudian  dilarutkan  dengan  menambahkan  larutan fisiologis  NaCl  0.85  %  (b/v)  dan  divortex  selama beberapa  menit.  Bakteri  hasil  vortex  kemudian diinokulasi pada akar bibit jabon.

## Dual  inokulasi  spora  FMA  dan  bakteri  serta pemeliharaan
Tanaman  diinokulasi  dengan  50  spora  FMA  yang permukaannya  telah  disterilkan  dan  5  mL  larutan bakteri  yang  mengandung  10 8 colony  forming  unit (CFU)  mL -1 yang  diletakkan  di  akar  tanaman  (Budi et al. 2012).  Bibit  dipelihara  di  rumah  kaca  dan  diamati selama  3  bulan.  Penyiraman  dilakukan  sesuai  dengan kebutuhan tanaman dengan melihat kondisi kelembaban media  tanam.  Selain  itu  juga  dilakukan  pembersihan dari  gulma.  Pengendalian  hama  dilakukan  secara manual yaitu dengan memusnahkan hama tersebut

## Variabel Pengamatan
Variabel  yang  diamati  yaitu  kolonisasi  FMA  (%), tinggi (cm), diameter (mm), berat kering pucuk (g), dan berat kering akar (g).

## Rancangan Percobaan dan Analisis data
Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap (RAL)  dengan  petak  terbagi  ( split  plot  design ). Pemberian  mikoriza  sebagai  petak  utama  dua  taraf terdiri  dari  kontrol  (M0)  dan  FMA  (M1)  serta pemberian  bakteri  yang  diisolasi  dari  spora Glomus sp. sebagai  anak  petak  19  taraf  terdiri  dari  kontrol  (B0), Isolat  bakteri Glomus sp.  1  (B1),  isolat  bakteri Glomus sp.  2  (B2),  Isolat  bakteri Glomus sp.  3  (B3),  Isolat bakteri Glomus sp.  4  (B4),  Isolat  bakteri Glomus sp.  5 (B5),  Isolat  bakteri Glomus sp.  6  (B6),  Isolat  bakteri Glomus sp.  7  (B7),  Isolat  bakteri Glomus sp.  8  (B8), Isolat bakteri Glomus sp. 9 (B9), Isolat bakteri Glomus sp. 10 (B10), Isolat bakteri Glomus sp. 11 (B11), Isolat bakteri Glomus sp.  12  (B12),  Isolat  bakteri Glomus sp. 13  (B13),  Isolat  bakteri Glomus sp.  14  (B14),  Isolat
bakteri Glomus sp.  15  (B15),  Isolat  bakteri Glomus sp. 16 (B16), isolat bakteri Glomus sp. 17 (B17), dan isolat bakteri Glomus sp. 18 (B18). Dengan demikian didapat 38  kombinasi  perlakuan  yang  diulang  sebanyak  3  kali sehingga  terdapat  114  unit  percobaan  dan  setiap  unit percobaan  terdapat  2  tanaman    sampel  untuk  diamati. Total  keseluruhan  tanaman  adalah  228  tanaman.  Data hasil dianalisis menggunakan sidik ragam software SAS 9.0  pada  taraf  nyata  5%,  jika  perlakuan  berpengaruh nyata dilakukan uji lanjut Duncan.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Isolasi dan identifikasi bakteri asal spora FMA
Bakteri  yang  diisolasi  dari  spora Glomus sp.  yang telah  disterilkan  permukaannya  kemudian  diidentifikasi berdasarkan  karakter  morfologinya  (warna,  bentuk tepian  dan  elevasi)  yang  disajikan  pada  Tabel  1 (Hadioetomo 1993).
Tabel 1 menunjukkan isolat bakteri yang berasal dari spora Glomus sp.  yang  telah  disterilkan  permukaannya dan  diidentifikasi  karakter  morfologinya  menghasilkan sebanyak 18 isolat bakteri. Jumlah bakteri yang diisolasi dari spora Glomus sp. tersebut diduga dipengaruhi oleh ukuran  spora  dari  jenis  FMA  yang  digunakan.  Setiap jenis  FMA  memiliki  ukuran  yang  berbeda-beda. Penelitian  ini  menggunakan  spora Glomus sp.  dengan ukuran  20-200  μm  (May  2011).  Berdasarkan  penelitian Budi et  al. (1999)  mengisolasi  bakteri  asal  sporocarp Glomus  mosseae mendapatkan  8  jenis  bakteri.  Budi et al. (2012)  menemukan  12  isolat  bakteri  yang  berasal dari spora Gigaspora sp. dan Glomus sp.

## Pertumbuhan Bibit Jabon
Rekapitulasi  sidik  ragam  pertumbuhan  bibit  jabon umur  12  MST  dapat  dilihat  pada  Tabel  2.  Berdasarkan Tabel  2  interaksi  perlakuan  FMA  dan  bakteri  tidak berpengaruh  terhadap  semua  parameter  pengamatan. Perlakuan  tunggal  FMA  berpengaruh  nyata  terhadap parameter  berat  kering  akar  dan  berpengaruh  sangat nyata  terhadap  parameter  kolonisasi  akar.  Perlakuan
tunggal  bakteri  berpengaruh  tidak  nyata  pada  semua parameter pengamatan.
Tabel  2    Rekapitulasi  sidik  ragam  pertumbuhan  bibit jabon umur 12 MST Parameter A B A x B Kolonisasi FMA (%) ** tn tn Pertambahan tinggi (cm) tn tn tn Pertambahan diameter (mm) tn tn tn Berat kering pucuk (g) tn tn tn Berat kering akar (g) * tn tn Ket:  A=  FMA,  B=  Bakteri,  **=  berpengaruh  sangat  nyata pada (P≤0.01), *= berpengaruh nyata pada (0.01<P≤0.05),  dan  tn=  berpengaruh  tidak  nyata  pada (P>0.05).

## Kolonisasi Akar
Gambar  1  menunjukkan  rata-rata  kolonisasi  akar bibit jabon pada perlakuan FMA yaitu 20.2%. Selain itu pada  penelitian  ini  kolonisasi  akar  bibit  jabon  umur  12 MST  tergolong  rendah,  sedang  dan  tinggi.  Kolonisasi akar  diklasifikasikan  berdasarkan  kriteria  O’Connor et al .  (2001)  yaitu  0%  tidak  terkolonisasi,  <  10%  rendah, 10-30%  sedang,  >  30%  tinggi.  Setiap  jenis  FMA memiliki  kemampuan  yang  berbeda-beda  dalam mengkoloni  akar  tanaman.  Berdasarkan  penelitian Istiqomah  (2017),  FMA  yang  berasal  dari  hutan sekunder  adalah  FMA  yang  paling  efektif  dalam mengkolonisasi bibit balsa umur 22 MST. Wood (1995) mengemukakan  besarnya  persentase  kolonisasi  akar dipengaruhi oleh jenis FMA, pH, temperatur, kelembaban,  logam  berat,  dan  kandungan  unsur  hara. Selain  itu  menurut  Hayman  (1982),  setiap  mikoriza memerlukan  pH  optimum  yang  berbeda-beda  untuk perkembangannya. Glomus fasciculatum dan Acaulospora  levis berkembang  paling  baik  pada  tanah masam, tetapi Glomus mosseae berkembang pada tanah netral  sampai  alkalis.  Ferguson  dan  Woodhead  (1982) menyatakan  bahwa Glomus berkembang  dengan  baik pada pH 5.5 sampai 6.5, Acaulouspora pH 5.0. Pada pH 4.5  hanya  hifa  halus  saja  dapat  menginfeksi  jaringan akar  tanaman  inang.  Media  tanam  yang  digunakan dalam  penelitian  ini  memiliki  nilai  pH  4.7  yang tergolong masam.
Tabel 1 Identifikasi isolat bakteri berdasarkan karakter morfologi (warna, bentuk, tepian dan elevasi).
Kode Isolat Warna Bentuk Tepian Elevasi B1 Putih susu Bundar Tak beraturan Timbul B2 Putih susu Bundar Licin Datar B3 Putih susu Tak beraturan dan menyebar Tak beraturan Datar B4 Kuning Bundar dengan tepian timbul Tak beraturan Seperti kawah B5 Putih susu Bundar Licin Cembung B6 Putih gading Bundar Licin Timbul B7 Putih susu Bundar Licin Timbul B8 Kuning Bundar Licin Seperti tombol B9 Putih gading Bundar Licin Timbul B10 Putih susu Bundar dengan tepian timbul Tak beraturan Timbul B11 Putih susu Bundar dengan tepian timbul Tak beraturan Cembung B12 Putih susu Tak beraturan dan menyebar Tak beraturan Datar B13 Putih susu Bundar dengan tepian timbul Tak beraturan Datar B14 Putih susu Bundar Licin Datar B15 Putih susu Bundar Licin Seperti tetesan B16 Putih susu Bundar dengan tepian kerang Berombak Seperti kawah B17 Putih susu Tak beraturan dan menyebar Tak beraturan Datar B18 Putih susu Bundar dengan tepian timbul Tak beraturan Seperti tombol
Gambar 1   Tingkatan kolonisasi akar bibit jabon umur 12 MST.
Gambar 2    Akar jabon yang tidak terkolonisasi dan terkolonisasi FMA. (A) akar jabon yang tidak terkolonisasi (B) akar jabon yang terkolonisasi hifa eksternal  (C) akar jabon yang terkolonisasi  hifa internal FMA pada umur 12 MST (perbesaran 400 kali).
Penelitian ini menggunakan metode pewarnaan akar non  vital.  Menurut  Merryweather  dan  Fitter  (1991), metode pewarnaan  non  vital  mampu  mendeteksi semua struktur mikoriza tanpa membedakan struktur yang aktif maupun  yang  tidak  aktif.  Gambar  2  menunjukkan  akar jabon  umur  12  MST  yang  tidak  terkolonisasi  dan  yang terkolonisasi.

## Tinggi dan Diameter Bibit Jabon
Tabel  2  menunjukkan  interaksi  antara  FMA  dan bakteri  serta  pengaruh  tunggal  tidak  berpengaruh  nyata terhadap  pertambahan  tinggi  dan  diameter  bibit  jabon. Gambar  1  menunjukkan  pengaruh  FMA  terhadap kolonisasi  akar  tergolong  tinggi  namun  belum  mampu meningkatkan  pertumbuhan  bibit  jabon  12  MST. Gambar  3  menunjukkan  pengaruh  FMA  terhadap  rata- rata  pertambahan  tinggi  dan  diameter  bibit  jabon  yaitu 1.1  cm  dan  0.77  mm  lebih  baik  dibanding  kontrol. Penelitian  Istiqomah  (2017)  menunjukkan  pemberian FMA  tidak  berpengaruh  nyata  terhadap  pertumbuhan tinggi  bibit  balsa  umur  22  MST.  Allen  (2001) mengemukakan bahwa persentase kolonisasi akar hanya menggambarkan  adanya  kesesuaian  tanaman  inang dengan  FMA,  tidak  mutlak  sebagai  indikator  tinggi rendahnya  pertumbuhan  tanaman  inang.  Menurut  Hart dan  Reader  (2002),  perhitungan  kolonisasi  FMA  di dalam  akar  hanya  menentukan  ada  atau  tidaknya  FMA
yang  mengkoloni  akar  dan  melewatkan  hifa-hifa eksternal  yang  tersebar  di  dalam  tanah.  Besar  kecilnya kolonisasi  FMA  di  dalam  akar  hanya  mencerminkan sebagian  kemampuannya  dalam  membantu  penyerapan nutrisi bagi tanaman.
Rendahnya  pertumbuhan  tinggi  dan  diameter tanaman  disebabkan  oleh  berbagai  faktor  salah  satunya faktor media tanam yang digunakan. Berdasarkan Tabel 3  media  yang  digunakan  tergolong  tidak  subur  dan masam  sehingga  mempengaruhi  pertumbuhan  tinggi dan  diameter  bibit  jabon.  Media  tanah  yang  digunakan memiliki  kapasitas  tukar  kation  (KTK)  dan  kejenuhan basa  (KB)  yang  rendah  sehingga  unsur  hara  yang tersedia  tercuci  dan  tidak  dapat  diserap  oleh  tanaman. Kandungan unsur hara makro (N, K, C, P, Ca, dan Mg) pada  tanah  tergolong  rendah  sampai  sangat  rendah. FMA  sangat  tergantung  pada  pengiriman  karbon  dari hasil  fotosintesis  tanaman  inangnya.  Simamora  & Salundik  (2006),  menyatakan  bakteri  membutuhkan unsur  karbon  (C)  sebagai  sumber  energi  dalam metabolisme  dan  perbanyakan  sel,  sedangkan  unsur nitrogen  (N)  dimanfaatkan  untuk  mensintesis  protein atau  pembentukan  protoplasma.  Karyaningsih  (2009), menjelaskan bahan organik yang mempunyai kandungan  C  terlalu  tinggi  menyebabkan  proses peruraian  terlalu  lama,  sebaliknya  jika  C  rendah  sisa nitrogen akan membentuk amonia yang dapat meracuni bakteri. Pada penelitian ini kandungan N dan C-organik
A B C

## Persen kolonisasi FMA
Tinggi Sedang Rendah Kolonis asi aka r ( % ) Bakteri
tergolong sangat rendah, sehingga diduga menyebabkan persaingan  terhadap  ketersediaan  N  dan  C-organik antara  FMA  dan  bakteri.  Selain  itu,  efektifitas  FMA yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  belum  teruji sehingga mempengaruhi isolat bakteri dalam meningkatkan  pertumbuhan  bibit  jabon.  Menurut Hardjowigeno  (2010), bakteri  berkembang  dengan  baik pada pH 5.5 atau lebih sedang, pada pH kurang dari 5.5 perkembangannya  terhambat.  Simanungkalit et  al. (2006)  menyatakan  pertumbuhan  optimum  rhizobia terjadi pada pH 6.8-7.

## Berat kering pucuk (BKP) dan Berat kering akar (BKA)
Interaksi  FMA  dan  bakteri  tidak  berpengaruh  nyata terhadap  BKP  dan  BKA  bibit  jabon  umur  12  MST, namun faktor tunggal FMA berpengaruh nyata terhadap parameter  BKA.  Gambar  4  menunjukkan  pengaruh FMA terhadap rata-rata nilai BKP bibit jabon tergolong
kecil  yaitu  0.18  gram.  Hal  ini  diduga  karena pertumbuhan daun bibit jabon yang tidak normal karena terserang  oleh  penyakit.  Berdasarkan  hasil  isolasi  daun yang  terserang  penyakit,  bibit  jabon  diduga  terserang oleh  penyakit  yang  disebabkan  oleh  bakteri,  namun tidak  dilakukan  identifikasi  lebih  lanjut.  Gejala  yang ditimbulkan pada daun bibit jabon yaitu terdapat bercak kecoklatan  pada  bagian  pinggir  dan  tengah  daun,  baik daun  muda  ataupun  daun  tua.  Munculnya  gejala penyakit  diduga  dipicu  oleh  kondisi  perbibitan  yang terlalu  lembab  dan  terlalu  rapat  pada  pengaturan polibag-polibag  bibit  sehingga  memudahkan  bakteri penyebab  penyakit  ini  muncul  dan  menular.  Penelitian di  rumah  kaca  dilaksanakan  dari  bulan  Desember  2016 hingga Maret 2017 yang memiliki intensitas curah hujan dan kelembaban yang cukup tinggi sehingga bibit jabon rentan  terserang  penyakit.  Gambar  4  menunjukkan pengaruh FMA terhadap rata-rata BKP bibit jabon umur 12 MST.
Tabel 3 Hasil analisis tanah sifat fisik dan kimia tanah media tanam jabon Sifat tanah Hasil analisis Status hara * Fisik Tekstur Pasir 70% - Debu 5% - Liat 25% - Kimia N-total 0.01% Sangat rendah P-total 0.03% Sangat rendah P-tersedia 0.027 mg/100g Sedang K-total 0.006% Sangat rendah K dd 0.12 cmol c /kg Rendah Mg dd 0.40 cmol c /kg Rendah Ca dd 1.19 cmol c /kg Sangat rendah C-organik 0.2586% Sangat rendah KB 21% Rendah KTK tanah 8.78 cmol c /kg Rendah pH tanah 4.7 Masam * = Kiteria berdasarkan Balai Penelitian Tanah (2009).
Gambar 3  Rata-rata pertumbuhan bibit jabon terhadap pemberian FMA (M1) dan tanpa FMA (M0).
1,07 P ertumbuha n sema i j abo n 0,76 1,1 0,77 M0 M1 FMA 1,2 1 0,8 0,6 0,4 0,2 0
Tinggi (cm) Diameter (mm)
Gambar 4 Rata-rata berat kering pucuk bibit jabon umur 12 MST terhadap pemberian FMA (M1) dan tanpa FMA (M0).
Tabel  4  menunjukkan  bahwa  pemberian  FMA berpengaruh  nyata  dibandingkan  tanpa  FMA  terhadap BKA  bibit  jabon  umur  12  MST.  FMA  dapat meningkatkan  BKA  bibit  jabon  4.69%  lebih  baik dibanding  tanpa  FMA.  BKA  dapat  menunjukkan efektifitas  penyerapan  nutrisi  oleh  tanaman  dari  dalam tanah. BKA merupakan akumulasi senyawa organik dan berkaitan  dengan  pertumbuhan  panjang  akar,  semakin panjang  akar  maka  bobot  kering  akar  menjadi  lebih besar.  Akar  tanaman  yang  bermikoriza  akan  membuat volume  dan  panjang  akar  yang  semakin  luas  sehingga unsur hara yang diserap oleh akar dapat mempengaruhi berat kering akar tanaman. Luturmas (2017) menyatakan  bahwa  pengaruh  tunggal  inokulasi  FMA jenis Glomus sp. 1 pada bibit jabon umur 12 MST dapat meningkatkan  berat  kering  akar  6.09  g  dibandingkan tanpa FMA.
Tabel 4 Hasil uji lanjut Duncan pengaruh tunggal FMA terhadap berat kering akar bibit jabon 12 MST
Perlakuan Berat kering akar (g) Peningkatan (%) M1 0.76 a 4.69 M0 0.73 b 0.00
Ket:  Angka-angka  yang  diikuti  oleh  huruf  yang  sama  pada kolom  yang  sama  menunjukkan  tidak    berbeda  nyata berdasarkan  uji  Duncan  pada  taraf  α  5% ( M0=  tanpa FMA, M1= pemberian FMA.

## SIMPULAN
1. Dihasilkan  18  isolat  bakteri  yang  diisolasi  dari spora FMA yang telah disterilkan permukaannya.
2. Isolat  yang  ditemukan  tidak  dapat  ditetapkan sebagai MHB meskipun kolonisasi akar bibit jabon tergolong  tinggi.  Pemberian  FMA  berpengaruh nyata  terhadap  parameter  kolonisasi  akar  dengan rata-rata  20.2%  dan  berat  kering  akar  mengalami peningkatan 4.69% dibanding kontrol.
3. Inokulasi FMA dan Isolat bakteri asal spora FMA belum  efektif  dalam  meningkatkan  pertumbuhan bibit jabon.

## SARAN
1. Pemberian perlakuan tertentu perlu dilakukan pada tanah  yang  tergolong  tidak  subur  dan  masam sehingga FMA dan bakteri bekerja secara optimal.
2. Melakukan uji efektifitas FMA sebelum digunakan sebagai isolat untuk penelitian lebih lanjut.

## DAFTAR PUSTAKA
Allen  MF.  2001.  Modeling  arbuscular  mycorrhizal infection;  is  percent  infection  an  appropriate variabel. Mycorrhiza J . 10:255-258. Balai Penelitian Tanah. 2009 . Petunjuk Teknis: Analisis Kimia  Tanah  Tanaman,  Air,  dan  Pupuk .  Bogor (ID): Balai Penelitian Tanah.
Barea JM, Pozo MJ, Azcon R, Azcon-Aguilar C. 2005.
Microbial co-operation in the rhizosphere . J Exp Bot . 56:1761-1778.
Budi  SW,  Blal  B,  Gianinazzi  S.  1999.  Surface sterilization  of Glomus  mosseae sporocarpes  for studying endomycorrhization in vitro . Mycorrhizae . 8:15-18.
Budi  SW,  Bakhtiar  Y,  May  NL.  2012.  Bacteria assosiated  with  arbuscula  mycorrhizal  spores Gigaspora  maragrita and  their  potential  for stimulating  root  mycorrhizal  colonization  and neem  ( Melia  azedarach Linn)  seedling  growth. Microbiol Indones . 6(4):180-188.
Budi  SW,  May  NL.  2013.  Bacteria  from  arbuscular mycorrhizal  fungi  spores Gigaspora sp.  and Glomus sp.  :  Their  antagonistic  effects  towards soilborne fungal pathogens and growth stimulation of Gigaspora sp. in vitro . BIOTROPIA . 20(1): 38-49.
Brundrett MC, Bougher N, Dell B, Grove T, Malajczuk N.  1996.  Working with  mycorrhizas  in  forestry and agriculture . Canberra (AU): Australian Cen- tre for International Agricultural Research.
Clap JP, Fitter AH, Merryweather JM. 1996. Arbuscular Mycorrhizal dalam Hall  GS,  Lasserre  P, Hawksworth  DL.  (eds.) Methods  for  the
Examination  of  Organismal  Diversity  in  Soils and  Sediments. Wallingford,  Oxon  (UK):CAB International. 145-161.
0,15 B K P (gr am ) 0,18 M0 M1 FMA 0,19 0,18 0,17 0,16 0,15
0,14 0,13
Ferguson,  JJ.  Woodhead,  HH.  1982.    Production  of endomycorrhizal  inoculum.  A.  Increase  and maintenance of vesicular arbuscular  mycorrhizal fungi. dalam Schenck, NC. Editor. Methods and Principles  of  Mycorrhizal Research.  American phytopathological. 47-55.
Frey-Klett,  Garbaye  J.  2005.  Mychorrhiza  helper bacteria:  a  promising  model  for  the  genomic analysis  of  fungal  bacterial  interactions. New Phytol . 168:4-8.
Garbaye  J.  1994.  Mycorrhiza  helper  bacteria:  A  new dimension  to  the  mycorrhizal  symbiosis. New Phytol . 128:197-210.
Hadioetomo  RS.  1993. Mikrobiologi  Dasar  Dalam Praktek. Jakarta (ID): Gramedia Pustaka Utama. Hart  MM,  Reader  RJ.  2002.  Host  plant  benefit  from association  with  arbuscular  mycorrhizal  fungi: variation due to differences in size of mycelium. Biol Fert Soils . 36:357-366.
Hayman  DS.  1982.  Influence  of  soils  and  fertility  on activity  and  survival  of  vesicular-arbuscular mycorrhizal  fungi. Phytopathology .  72:1119- 1125.
Hardjowigeno  S.  2010. Ilmu  Tanah .  Jakarta  (ID): Akademika Pressindo.
Istiqomah  FN.  2017.  Peran  fungi  mikoriza  arbuskula dan  asam  humat  terhadap  pertumbuhan  balsa ( Ochroma bicolor rowlee.) pada tanah terkontaminasi timbal. JPSL. 7(1):72-78 Karyaningsih  I.  2009.  Pembenah  tanah  dan  fungi mikorhiza  arbuskula  (FMA)  untuk  peningkatan kualitas  bibit  tanaman  kehutanan  pada  areal bekas  tambang  batubara.  [tesis].  Bogor  (ID): Institut Pertanian Bogor.
Luturmas  FYR.  2017.  Efektifitas  fungi  mikoriza arbuskula (FMA) serta pupuk nitrogen dan fosfat terhadap pertumbuhan bibit
jabon ( Anthocephallus  cadamba Roxb.). JST .  8(1):20- 25
Mansur I, Tuheteru FD. 2010. Kayu Jabon . Jakarta (ID): Penebar Swadaya.
Marschner  P,  Crowley  DE.  1996.  Root  colonization  of mycorrhizal and nonmycorrhizal pepper ( Capsicum annuum ) by Pseudomonas
fluorescens 2-79RL. New Phytol . 134:115-122. May  NL.  2011.  Diversitas  bakteri  asal  spora  fungi mikoriza  arbuskula Gigaspora Sp.  dan Glomus sp.  serta  potensinya  sebagai  Mycorrhiza  helper bacteria  [tesis].  Bogor  (ID):    Institut  Pertanian Bogor.
Merryweather JW, Fitter AH.1991. A  modified  method for elucidating the structure of the fungal partner in a vesicular-arbuscular mycorrhiza. Mycol Res. 95:1435-1437.
O’Connor  PJ,  Smith  SE,  Smith  FA.  2001.  Arbuscular mycorrhizal  associa  tions  in  the  southern southern simpson desert. Aust J Bot . 49:493-499. Pacioni G. 1992. Wet-sieving and decanting techniques for  the  extraction  of  spores  of  vesicular- arbuskular  fungi.  317-322. In :  Norris  JR.  Read DJ. Varma AK. editor. Methods In Microbiology. London (GB): Academic Press.
Sasli  I,  Ruliansyah  A.  2012.  Pemanfaatan  mikoriza arbuskula spesifik lokasi untk efisiensi pemupukan  pada  tanaman  jagung  di  lahan gambut tropis. AGROVIGOR . 5(2): 65-74.
Simamora  H,  Salundik.  2006. Meningkatkan  Kualitas Kompos . Jakarta : PT Agro Media Pustaka.
Simanungkalit    RDM,  Saraswati  R,  Hastuti  RD,  Husen E.  2006. Bakteri  Penambat  Nitrogen,  Pupuk Organik  dan  Pupuk  Hayati .  Bogor  (ID):  Balai Penelitian Tanah.
Smith SE, Read DJ. 2008. Mycorrhizal symbiosis . Third Edition. New York (USA) : Academic Press. Soerianegara  I,  Lemmens  RHMJ.  1993. Plant Resources  of  South-East  Asia  5(1):  Timber Trees:  Major  Commercial  Timbers .  Belanda:
Pudoc Scientific Publishers.
Wood  M.  1995. Enviromental  Soil  Biology 2nd . Cambridge (UK): Chapman & Hall.