Potensi teknik proteksi silang terhadap jumlah stomata dan luas daun yang terinfeksi virus gemini pada tanaman cabai rawit ( Capsicum frutescens L.)
Potential of cross protection techniques on the number of stomata and area of leaves infected with gemini virus in cayenne pepper ( Capsicum frutescens L.) plant
Lita Oktafiana Huttni 1 , Muhammad Taufik 2* , Gusnawaty HS 2 , Asmar Hasan 2 , Muhammad Botek 2
1 Program Studi Magister Agronomi, Fakultas Pertanian, Universitas Halu Oleo, Kendari, Sulawesi Tenggara, 93231
2 Jurusan Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Universitas Halu Oleo, Kendari, Sulawesi Tenggara, 93231
* Penulis Korespodensi: muhammad.taufik_faperta@uho.ac.id
Diterima Tanggal 01 September 2023, Disetujui Tanggal 31 Januari 2024 DOI: https://doi.org.10.51978/japp.v24i1.749

## Abstrak
Virus  gemini  merupakan  salah  satu  organisme  pengganggu  tanaman  yang  menyerang  beberapa komoditas sayuran termasuk tanaman cabai. Penyakit ini disebabkan oleh Pepper yellow leaf curl virus (PepYLCV)  yang  masuk  dalam  genus  Begomovirus  dari  famili Geminiviridae .  Penularan  virus  sangat efisien  terjadi  melalui  perantara  serangga  vektor  kutukebul  ( Bemisia  tabaci )  secara  persisten.  Penyakit virus gemini dapat menimbulkan kerugian yang besar bahkan gagal panen jika tanaman terinfeksi pada waktu masih sangat muda. Salah satu pengendalian virus gemini  yang efektif adalah dengan melakukan teknik proteksi silang. Tujuan penelitian ini adalah mengevaluasi kemampuan teknik proteksi silang untuk mengurangi  keparahan  penyakit  virus  gemini.  Lokasi  penelitian  di  Desa  Wolasi,  Kabupaten  Konawe Selatan. Penelitian dilaksanakan dengan Rancangan Acak Kelompok (RAK), terdiri dari 10 unit perlakuan dan diulang sebanyak 3 kali. Variabel yang diamati adalah masa inkubasi virus gemini, jumlah stomata dan luas daun.  Strain lemah mampu  menekan  laju infeksi strain kuat berdasarkan jumlah stomata dan luas daun sehingga teknik proteksi silang dapat mengurangi keparahan penyakit. Jumlah stomata pada setiap gejala bervariasi tergantung gejala yang ditimbulkan. Daun yang bergejala berat maka jumlah stomatanya lebih sedikit dibandingkan dengan daun yang bergejala sedang dan ringan. Luas daun yang diinokulasi virus dengan strain lemah  dengan 1  dan  5 ekor serangga vektor yang disusul  dengan virus strain kuat (proteksi silang) memiliki nilai tertinggi yaitu 875,93 cm 2 dan 708,37 cm 2 dibandingkan dengan luas daun yang diinokulasi virus dengan strain kuat dengan 1 dan 5 ekor serangga vektor yang disusul dengan virus strain lemah yang hanya memiliki nilai 563,50 cm 2 dan 556,17 cm 2 .
Kata Kunci: virus gemini, kutukebul, proteksi silang

## Abstract
Geminivirus is a plant pest that attacks several vegetable commodities, including chili plants. This disease is caused by Pepper yellow leaf curl virus (PepYLCV), which belongs to the genus Begomovirus of the family  Geminiviridae.  Transmission  of  the  virus  very  efficiently  occurs  persistently  through  the  whitefly vector insect (Bemisia tabaci). Geminivirus disease can cause significant losses and even crop failure if plants are infected when they are very young. One effective control of the Geminivirus is to carry out cross- protection techniques. This study aimed to evaluate the ability of cross-protection methods to reduce the severity  of  Geminivirus  disease.  The  research  location  is  Wolasi  Village,  South  Konawe  Regency.  The research was conducted using a Randomized Block Design (RBD) consisting of 10 treatment units and repeated thrice. The variables observed were the incubation period of Geminivirus, the number of stomata, and the leaf area. Weak strains can suppress the infection rate of strong strains based on the number of stomata  and  leaf  area  so  that  cross-protection  techniques  can  reduce  the  severity  of  the  disease.  The number  of  stomata  for  each  symptom  varies  depending  on  the  symptom  caused.  Leaves  with  severe
symptoms have fewer stomata than leaves with moderate and mild symptoms. The leaf area inoculated with  a  weak  strain  of  the  virus  with  1  and  5  vector  insects  followed  by  a  strong  strain  of  virus  (cross- protection)  had  the  highest  value,  namely  875,93  cm 2 and  708.37  cm 2 compared  with  the  leaf  area inoculated with the strong strain of virus with 1 and 5 vector insects, followed by the weak strain of virus which only had a value of 563,50 cm 2 and 556,17 cm 2 .
Keywords: Geminivirus, whitefly, cross-protection

## PENDAHULUAN
Cabai  rawit  merupakan  salah  satu komoditas  sayuran  penting  di  Indonesia. Cabai rawit pada umumnya dimanfaatkan oleh masyarakat sebagai bahan tambahan bumbu dapur, dikonsumsi secara langsung, kebutuhan  industri,  sambal  aneka  gorengan dan dimanfaatkan sebagai obat (Saleh et al., 2018; Pawar et al., 2011).  Penanaman cabai rawit  terus  digalakkan  untuk  memenuhi kebutuhan  konsumen  tetapi  produksi  masih tergolong rendah dan terjadi penurunan pada tahun  2021  (BPS  Nasional,  2022)  .  Badan Pusat  Statistik  (BPS)  mencatat,  jumlah  itu turun 8,09% dari tahun 2020 yang sebesar 1,5 juta ton. Penurunan produksi cabai rawit pada 2021 merupakan yang pertama kalinya dalam lima tahun terakhir terjadi di Indonesia. Rerata produksi  cabai  rawit  di  Sulawesi  Tenggara saat  ini  hanya  sekitar  1266  ton  (BPS  Sultra, 2022).  Adapun  konsumsi  cabai  rawit penduduk  Indonesia  tahun  2021  sebesar 6,78%  dan  tahun  2022  meningkat  sebesar 71,33% sehingga produktivitas tanaman cabai rawit perlu ditingkatkan.
Peningkatan  produktivitas  tanaman cabai  sangat  dipengaruhi  oleh  faktor lingkungan,  salah  satunya  adalah  serangan organisme  pengganggu  tanaman  (Hussain  & Abid,  2011;  Wilyus et  al., 2022).  Organisme pengganggu  tanaman  dapat  menyerang tanaman  dari mulai  benih hingga  tanaman  di panen.  Salah  satu  organisme  pengganggu tanaman  yang  menyerang  tanaman  cabai adalah  virus  gemini  (Solahudin et  al., 2015). Penyakit  ini  disebabkan  oleh Pepper  yellow leaf curl virus (PepYLCV) yang masuk dalam genus  Begomovirus  dari  famili  Geminiviridae (Nada  &  Hidayat,  2020;    Setyowati et  al., 2021).  Serangan  kutu  kebul  yang  membawa virus  penyakit  kuning  dan  penyakit  keriting mencapai 30% dari total luas serangan hama pada tahun 2018 dan meningkat menjadi 40% pada  tahun  2020  (Kementan,  2020;  (Temaja
et  al., 2022);  Setyowati et  al. ,  2021).  Gejala penyakit kuning pada tanaman cabai memiliki keunikan  sehingga  cukup  mudah  dikenali  di lapangan.  Beberapa  gejala  yang  ditemukan ialah  daun  menguning,  daun  menggulung  ke atas  dan  atau  ke  bawah,  malformasi,  daun- daun  muda  mengecil,  belang  dan  kerdil (Taufik et al., 2023).
Penularan  virus  sangat  efisien  terjadi melalui  perantara  serangga  vektor  kutukebul ( Bemisia  tabaci )  secara  persisten  dan  dapat menularkan  virus  gemini artinya  satu  kali kutukebul mengambil makanan dari tanaman yang mengandung virus kuning maka selama hidupnya  dapat  menularkan  virus  kuning (Inoue-Nagata et  al., 2016).  Penyakit  virus gemini  dapat  menimbulkan  kerugian  yang besar  bagi  petani  karena  jika  tanaman terinfeksi  pada  waktu  masih  sangat  muda, tanaman  terhambat  pertumbuhannya  dan kerdil  sehingga  mengakibatkan  turunnya produksi cabai hingga jauh dari produksi cabai secara  optimal  (Sayekti et  al., 2021). Penurunan  produksi  cabai  disebabkan terganggunya  atau  rusaknya  organ  kloroplas sehingga daun mempunyai bentuk yang tidak normal.  Hal  ini  tentu  akan  berpengaruh terhadap  jumlah  stomata  dan  luas  daun tanaman.  Jika  luas  daunnya  rendah  maka jumlah  stomata  dan  kandungan  klorofilnya juga  rendah  sehingga  jumlah  fotosintat  yang dihasilkan  untuk  pertumbuhan  tanaman  juga akan menurun.
Pengendalian  penyakit  virus  pada cabai  relatif  lebih  sulit  dibandingkan  dengan patogen  lain  seperti  jamur,  bakteri  dan nematoda  (Sari,  2023).  Pengendalian  virus gemini  menjadi  sulit  karena  keragaman genetik yang tinggi sehingga sulit menemukan jenis cabai yang tahan, kisaran tanaman inang yang luas dan dapat ditularkan oleh kutukebul secara nirpersisten (Akin,  2005).  Oleh  sebab itu, diperlukan metode yang efektif dan efisien dalam  pengendalian  virus  gemini  yang menginfeksi  tanaman  cabai.  Salah  satu
pengendalian virus gemini  yang efektif adalah dengan melakukan teknik proteksi silang.
Proteksi  silang  adalah  penggunaan isolat  lemah  suatu  virus  untuk  melindungi tanaman  dari  kerusakan  ekonomis  yang ditimbulkan  oleh  infeksi  isolat  ganas  virus yang  sama.  Mekanisme  proteksi  silang merupakan penggunaan faktor tanaman inang yang diperlukan untuk bereplikasi di dalam sel, seperti  penghambatan  proses  penyusunan partikel  virus,  hambatan  translokasi  virus dalam tanaman inang, serta induksi ketahanan  bersifat  sistemik  strain  lemah (Aranda et  al., 1993).  Penggunaan  teknik proteksi  silang  untuk  mengendalikan  virus gemini  pada  tanaman  cabai  masih  terbatas informasinya khususnya di Sulawesi Tenggara.  Oleh  karena  itu  penelitian  ini bertujuan mengonfirmasi teknik proteksi silang untuk  mengendalikan  virus  gemini  pada tanaman cabai.

## BAHAN DAN METODE

## Tempat dan Waktu
Penelitian dilaksanakan di lahan petani di Desa Wolasi,
Kecamatan Wolasi, Kabupaten  Konawe  Selatan,    Provinsi
Sulawesi
Tenggara, di Laboratorium Fitopatologi  Fakultas  Pertanian  Universitas Halu Oleo Kendari dan Laboratorium Virologi Universitas  Gadjah  Mada,  dari  bulan  Maret sampai Juli 2023.

## Peralatan dan Bahan
Alat yang digunakan diantaranya label, plastik  waring, rockwool ,  baki  semai,  polibag ukuran  25  ×  25,  cangkul,  alat  penyiram, gunting, mistar, kurungan serangga, aspirator, botol  koleksi  serangga,  mikroskop,  aplikasi Petiole Pro, kamera handphone dan alat tulis menulis.  Bahan  yang  digunakan  diantaranya adalah  benih  tanaman  cabai  rawit  varietas Dewata,  plastik  klip,  kuteks  bening,  selotip, kaca  preparat,  CaCl 2 ,  pupuk  kandang  ayam, sumber  inokulum,  serangga  kutu  kebul, tanaman  cabai  tanpa  gejala,  tanaman  cabai yang  terinfeksi  virus  gemini  dengan  strain kuat,  tanaman  cabai  yang  terinfeksi  virus gemini  dengan  strain  lemah,  insektisida sintetik dan tanah top soil.

## Prosedur Penelitian
Perbanyakan  Serangga  Vektor  Kutukebul ( Rearing )
Perbanyakan serangga vektor kutukebul  dilakukan  sebagai  bahan  untuk penularan  virus.  Serangga  kutukebul  yang digunakan  berasal  dari  tanaman  cabai  yang menunjukkan gejala daun keriting kuning yang diperoleh  dari  lapangan  di  Desa  Wolasi Kabupaten  Konawe  Selatan.  Serangga  yang diperoleh  dari  lapangan  tersebut,  kemudian dipelihara  dan  diperbanyak  dalam  kotak (kedap serangga) berukuran lebar 60 cm dan tinggi  100  cm  yang  berisikan  tanaman  cabai sehat. Untuk menghindari kontaminasi dengan virus lain, kutukebul tersebut dipelihara hingga melewati siklus hidupnya selama 2-3 minggu. Serangga muda dan telur yang masih berada dalam  kotak  tersebut,  kemudian  dipindahkan ke dalam kotak lain yang berisikan inang cabai sehat.  Serangga  dewasa  (imago)  hasil  dari perbanyakan  ( rearing )  dipelihara  hingga mencukupi jumlah kebutuhan dalam penelitian,  kemudian  serangga-serangga tersebut  dapat  digunakan  sebagai  bahan perbanyakan sumber inokulum.

## Sumber Inokulum Tanaman Cabai Sehat
Sumber inokulum awal adalah berasal dari  tanaman  cabai  sehat  yang  berasal  dari lapangan di Desa Wolasi Kabupaten Konawe Selatan. Serangga hasil perbanyakan ( rearing )  selanjutnya  akan  digunakan  pada tanaman uji.
Sumber  Inokulum  Tanaman  Cabai  yang Terinfeksi Virus Gemini dengan Strain Kuat
Sumber inokulum berasal dari tanaman cabai bergejala daun keriting kuning yang  berasal  dari  lapangan  di  Desa  Wolasi Kabupaten  Konawe  Selatan.  Serangga  hasil perbanyakan ( rearing ), kemudian dipindahkan lagi  ke  dalam  kotak  lain  yang  berisikan tanaman  cabai  bergejala  atau  sumber inokulum dengan strain kuat.
Sumber  Inokulum  Virus  Gemini  dengan Strain Lemah
Sumber inokulum berasal dari tanaman  cabai  tidak  bergejala  daun  keriting kuning  yang  berasal  dari  lapangan  di  Desa Wolasi Kabupaten Konawe Selatan. Serangga
hasil  perbanyakan  ( rearing ),  kemudian dipindahkan  lagi  ke  dalam  kotak  lain  yang berisikan tanaman cabai tidak bergejala atau sumber inokulum dengan strain lemah.
Persiapan Benih dan Pemeliharaan Tanaman Cabai Benih
cabai terlebih dahulu disemaikan  pada  media rockwoll ,  setelah berkecambah  (terbuka  kotiledon)  segera dipindahkan  ke baki  tray yang  berisi  media tanam.  Setelah  tanaman  cabai  terbentuk  4 daun  kemudian  bibit  cabai  dipindahkan  ke dalam  polibag  berukuran  25  ×  25  cm  yang telah  berisi  media  tanam  tanah  dan  pupuk kandang  ayam  (2:1)  dan  dipelihara  dalam screen house yang kedap serangga. Setelah 1 minggu sejak dipindahkan ke dalam polibag, tanaman uji siap digunakan untuk penelitian.
Pemeliharaan tanaman meliputi penyiraman,  penyiangan  dan  pewiwilan. Penyiraman dilakukan dua kali yaitu pagi dan sore hari dengan tujuan untuk mempertahankan  kadar  air  tanah  kapasitas lapang. Penyiangan dilakukan dengan membersihkan  rumput  liar  atau  gulma  yang tumbuh disekitar tanaman. Pewiwilan dilakukan  membuang  baik  tunas  maupun daun  yang  sudah  tua  bertujuan  agar  nutrisi yang diserap oleh tanaman.
Inokulasi  Virus  Strain  Kuat  dan  Periode Inokulasi pada Tanaman
Inokulasi  virus  dilakukan  setelah  satu minggu pindah tanam ke polibag atau setelah tanaman  cabai  terbentuk  4  daun.  Inokulasi virus dilakukan dengan memasukkan serangga  vektor  hasil rearing yang  telah melewati periode akuisisi virus dengan strain kuat  ke  tanaman  uji,  yaitu  (1  ekor/tanaman dan  5  ekor/tanaman).  Setelah  diinokulasi tanaman uji disungkup rapat dengan kain kasa dan  diberi  periode  inokulasi  kemudian dilakukan pengamatan gejala. Serangga yang digunakan  sebagai  bahan  inokulasi  virus adalah serangga dewasa (imago).
Inokulasi  Virus  Strain  Lemah  dan  Periode Inokulasi pada Tanaman
Inokulasi  virus  dilakukan  setelah  satu minggu pindah tanam ke polibag atau setelah tanaman  cabai  terbentuk  4  daun.  Inokulasi virus dilakukan dengan memasukkan
serangga  vektor  hasil rearing yang  telah melewati periode akuisisi virus dengan strain lemah ke tanaman  uji, yaitu (1  ekor/tanaman dan  5  ekor/tanaman).  Setelah  diinokulasi tanaman uji disungkup rapat dengan kain kasa dan  diberi  periode  inokulasi  kemudian dilakukan pengamatan.
Inokulasi  Virus  Strain  Lemah  Disusul dengan  Inokulasi  Virus  Strain  Kuat  dan Periode Inokulasi pada Tanaman
Inokulasi  virus  dilakukan  satu  minggu pindah  tanam  ke  polibag  atau  setelah tanaman  cabai  terbentuk  4  daun.  Inokulasi virus dilakukan dengan memasukkan serangga  vektor  hasil rearing yang  telah melewati periode akuisisi virus dengan strain lemah ke tanaman  uji, yaitu (1  ekor/tanaman dan  5  ekor/tanaman).  Setelah  diinokulasi tanaman uji disungkup rapat dengan kain kasa dan diberi periode inokulasi. Apabila tanaman uji  tidak  menunjukkan  gejala  atau  bergejala ringan  maka  tanaman  uji  dapat  dilanjutkan pada  tahap  selanjutnya  yaitu  inokulasi  virus dengan  strain  kuat  (proteksi  silang).  Setelah diinokulasi  tanaman  uji  kemudian  disungkup rapat  dengan  kain  kasa  dan  diberi  periode inokulasi. Interval waktu antara inokulasi virus strain  lemah  dengan  virus  strain  kuat  yaitu selama  7  hari.  Pengamatan  hasil  inokulasi dilakukan  kembali  sampai  dengan  gejalanya muncul.

## Inokulasi Virus Strain Kuat Disusul dengan Inokulasi  Virus  Strain  Lemah  dan  Periode Inokulasi pada Tanaman
Inokulasi  virus  dilakukan  satu  minggu pindah  tanam  ke  polibag  atau  setelah tanaman  cabai  terbentuk  4  daun.  Inokulasi virus dilakukan dengan memasukkan serangga  vektor  hasil rearing yang  telah melewati periode akuisisi virus dengan strain kuat  ke  tanaman  uji,  yaitu  (1  ekor/tanaman dan  5  ekor/tanaman).  Setelah  diinokulasi tanaman uji disungkup rapat dengan kain kasa dan  diberi  periode  inokulasi.  Kemudian dilanjutkan  pada  tahap  selanjutnya  yaitu inokulasi  virus  dengan  strain  lemah.  Setelah diinokulasi  tanaman  uji  kemudian  disungkup rapat  dengan  kain  kasa  dan  diberi  periode inokulasi. Interval waktu antara inokulasi virus strain  kuat  dengan  virus  strain  lemah  yaitu selama  7  hari.  Pengamatan  hasil  inokulasi
dilakukan  kembali  sampai  dengan  gejalanya muncul.
Periode inokulasi virus ke tanaman uji ditentukan  selama  48  jam.  Setelah  melewati periode  inokulasi,  serangga  vektor  kutukebul dimatikan  dengan  cara  disemprot  insektisida sintetik Curacron ( Profenofos 500EC).
Pengambilan  Isolat  dan  Deteksi  Hasil Inokulasi dengan PCR
Pengambilan  isolat  hasil  inokulasi dilakukan pada daun cabai yang menunjukkan gejala  infeksi  virus  gemini,  selanjutnya  isolat tersebut  dimasukkan  ke  dalam  plastik  klip yang telah  berisi  kalsium  klorida (CaCl 2 )  dan disimpan  di  dalam  suhu-20 0 C  untuk  proses identifikasi  patogen.  Identifikasi  dilakukan dengan  teknik  PCR  menggunakan  primer universal Begomovirus Krusty  dan  Homer (Revill et al., 2003). Prosedur PCR dilakukan mengikuti metode (Rojas, 1993) .

## Rancangan Penelitian
Penelitian dilaksanakan dengan Rancangan Acak Kelompok (RAK), terdiri dari 10 unit perlakuan. Setiap unit perlakuan terdiri 2 tanaman, masing-masing perlakuan diulang sebanyak  3  kali.  Total  terdapat  60  tanaman. Tanaman  diatur  sedemikian  rupa  sesuai kaidah  Rancangan  Acak  Kelompok  (RAK). Unit  perlakuan  tersebut  adalah  sebagai berikut:
B1 = Inokulasi 1 ekor serangga vektor sehat B2 = Inokulasi 5 ekor serangga vektor sehat B3  =  Inokulasi  virus  gemini  strain  lemah dengan 1 ekor serangga vektor B4  =  Inokulasi  virus  gemini  strain  lemah dengan 5 ekor serangga vektor B5 = Inokulasi virus gemini strain kuat dengan 1 ekor serangga vektor B6 = Inokulasi virus gemini strain kuat dengan 5 ekor serangga vektor B7  =  Inokulasi  virus  gemini  strain  lemah dengan  1  ekor  serangga  vektor kemudian disusul dengan inokulasi virus gemini strain kuat (proteksi silang)
B8  =  Inokulasi  virus  gemini  strain  lemah dengan  5  ekor  serangga  vektor kemudian disusul dengan inokulasi virus gemini strain kuat (proteksi silang)
B9 = Inokulasi virus gemini strain kuat dengan 1  ekor  serangga  vektor  kemudian
disusul  dengan  inokulasi  virus  gemini strain lemah
B10  =  Inokulasi  virus  gemini  strain  kuat dengan  5  ekor  serangga  vektor kemudian  disusul  dengan  inokulasi virus gemini strain lemah

## Variabel Pengamatan
Variabel yang diamati dalam penelitian ini  adalah  masa  inkubasi  virus  atau  awal muncul  gejala  virus  gemini.  Masa  inkubasi virus dan gejala dilakukan dengan mengamati tanaman cabai hasil inokulasi dengan ditandai munculnya  gejala  awal  pada  tanaman  cabai setelah diinokulasikan virus dengan serangga kutu  kebul.  Pengamatan  dilakukan  setiap setiap hari.
Pengamatan jumlah stomata dilakukan dengan  cara  mencetak  stomata  dengan menggunakan  kuteks  transparan  yang dioleskan di bawah permukaan daun. Kuteks yang  telah  mengering  kemudian  diambil dengan  menggunakan  selotip  bening  dan ditempelkan pada kaca preparat. Selanjutnya pengamatan  stomata  dilakukan  dengan menggunakan mikroskop dengan perbesaran 40×.
Pengamatan  luas  daun  dilakukan dengan cara mengambil daun 1 daun dari tiap- tiap sampel, kemudian pengukuran luas daun dilakukan  dengan  menggunakan  metode aplikasi Petiole Pro.

## Analisis Data
Data  diambil  dari  hasil  pengamatan yang  diperoleh  dan  dianalisis  dengan menggunakan sidik ragam, jika ada perbedaan antara perlakuan maka dilanjutkan dengan uji Beda Nyata Jujur (BNJ) pada taraf kepercayaan 95%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Masa Inkubasi
Masa  inkubasi  virus  gemini  setelah diinokulasi dengan serangga vektor kutukebul dapat dilihat pada Tabel 1. Berdasarkan pada tabel  tersebut  masa  inkubasi  virus  gemini yang  tercepat  terdapat  pada  tanaman  cabai yang  diinokulasi  virus  gemini  strain  kuat dengan  5  ekor  kutu  kebul/tanaman  yaitu  14 hari setelah inokulasi (HSI).
Tabel 1. Masa inkubasi virus gemini pada tanaman cabai yang diinokulasi Perlakuan Masa Inkubasi (HSI) B1 Tidak ada gejala B2 Tidak ada gejala B3 20 B4 14 B5 21 B6 21 B7 28 B8 28 B9 16 B10 16 Variasi gejala dipengaruhi oleh beberapa  faktor  seperti  populasi  kutukebul, umur  tanaman  dan  fase  pertumbuhan tanaman.  Hal  ini  sejalan  dengan  penelitian yang  dilakukan  oleh  Pramono  (2015)  bahwa semakin  meningkat  populasi  kutukebul semakin  cepat  muncul  gejala  penyakit  dan semakin  tinggi  keterjadian  penyakit.  Faktor lain  yang  juga  berpengaruh  terhadap munculnya  gejala  adalah  faktor  lingkungan, seperti  tingkat  kesuburan  tanah  dan  iklim  di daerah  pertanaman.  Gejala  penyakit  yang ditimbulkan virus gemini pada tanaman cabai berupa bercak  kuning  di  sekitar tulang daun, kemudian tampak tulang daun lebih hijau atau daun berkembang menjadi warna kuning yang
sangat  jelas  dan  helai  daun  menggulung  ke atas ( cupping ). Gejala lanjut daun-daun muda menjadi  kecil-kecil,  helai  daun  berwarna kuning cerah atau hijau muda yang berseling dengan  warna  kuning  dan  cerah  yang akhirnya  tanaman  kerdil  (Mudmainah  & Purwanto , 2010).  Namun  tidak  semua  daun dapat memperlihatkan gejala terinfeksi seperti daun  menjadi  berubah  berwarna  kuning, karena munculnya  gejala sangat  dipengaruhi oleh strain virus.
Jumlah Stomata Terbuka
pada Pengamatan di Pagi Hari
Pengaruh  inokulasi  virus  gemini terhadap jumlah stomata pada tanaman cabai rawit  menunjukkan  bahwa  gejala  berat  di peroleh  pada  perlakuan  B6,  B9  dan  B10 dengan  jumlah  stomata  masing-masing sebesar 18%, 17,76% dan 18,67% dan yang menunjukkan  jumlah  stomata  terendah  pada perlakuan B9 yaitu 17,76%. Sedangkan gejala sedang  dan  ringan  terdapat  pada  perlakuan B3,  B4  B5  B6  B7  B8  B9  dan  B10  dengan jumlah  stomata  terendah  terdapat  pada perlakuan  B3  sebesar  28,67%  untuk  gejala sedang  dan  28%  untuk  gejala  ringan.  Daun tanaman tanpa gejala (sehat) di peroleh pada semua  perlakuan  dan  yang  menunjukkan jumlah  stomata  tertinggi  terpata  pada perlakuan B1 sebesar 65,33% (Gambar 1).
Gambar 1. Jumlah stomata daun cabai yang terbuka pada pada pagi hari pada setiap perlakuan
Jumlah Stomata Terbuka pada

## Pengamatan di Siang Hari
Pengaruh  inokulasi  virus  gemini terhadap jumlah stomata pada tanaman cabai rawit di siang hari menunjukkan bahwa gejala berat  diperoleh  pada  perlakuan  B6,  B9  dan B10  dengan  jumlah  stomata  masing-masing sebesar  12,33%,  18,67%  dan  16,67%  dan yang  menunjukkan  jumlah  stomata  terendah pada  perlakuan  B6  sebesar  12,33%.
Sedangkan gejala sedang dan ringan terdapat pada perlakuan B3, B4 B5 B6 B7 B8 B9 dan B10 dengan jumlah stomata terendah terdapat pada perlakuan B10 sebesar 20% untuk gejala sedang dan B9 sebesar 29,67% untuk gejala ringan. Daun tanaman tanpa gejala (sehat) di peroleh  pada  semua  perlakuan  dan  yang menunjukan jumlah stomata tertinggi terdapat pada perlakuan B2 sebesar 59,675% (Gambar 2).
Gambar 2.  Jumlah stomata daun cabai yang terbuka pada pada siang hari pada setiap perlakuan
Inokulasi  virus  dengan  strain  lemah dengan  1  dan  5  ekor  serangga  vektor  yang disusul  dengan  strain  kuat  (proteksi  silang) dapat  mengurangi  keparahan  penyakit  virus gemini  yang  ditandai  dengan  tidak  adanya gejala  berat  pada  perlakuan  B7  dan  B8  dan hanya  bergejala  sedang  dan  ringan. Sedangkan inokulasi virus strain kuat dengan 1  dan  5  ekor  serangga  vektor  yang  disusul dengan virus strain lemah pada perlakuan B9 dan  B10  menunjukkan  adanya  gejala  berat. Jumlah stomata pada setiap gejala bervariasi tergantung dari gejala yang ditimbulkan. Daun yang bergejala berat maka jumlah stomatanya lebih sedikit dibandingkan dengan daun yang bergejala sedang dan  ringan  (Gambar  1 dan 2) sehingga infeksi virus sangat mempengaruhi jumlah stomata.
Daun  yang  terinfeksi  menjadi  rapuh dikarenakan  struktur  daun  yang  mulai  rusak seperti  epidermis  dan  floem.  Hasil  penelitian Nuryani (2019) menyatakan bahwa epidermis pada  daun  sakit  bentuknya  tidak  beraturan dengan  dinding  tebal.  Epidermis  atas  dan bawah daun sehat menunjukkan sel epidermis berbentuk  lempengan  dengan  dinding  tipis tersusun teratur dan stomata yang lebih jelas dan  banyak  dibandingkan  dengan  sesudah terserang  virus  gemini.  Rata-rata  total diameter  stomata  pada  epidermis  atas  dan bawah  pada  daun  sehat  lebih  besar sedangkan diameter stomata pada epidermis atas  dan  bawah  pada  daun  sakit  lebih  kecil. Hal  ini  dipengaruhi  oleh  sel  epidermis  yang saling  berdesakan  membuat  sel  yang  ada disekitar  epidermis  seperti  stomata  juga terpengaruh.
Selanjutnya Hopkins (2008) menuturkan bahwa pada pagi hari peningkatan  intensitas  cahaya  berpengaruh terhadap peningkatan suhu, namun kelembaban udara masih tinggi. Kelembaban udara  yang  tetap  tinggi  akan  meningkatkan gradien  tekanan  uap  antara  daun  dengan udara.  Kondisi  ini  memicu  terjadinya transpirasi  yang  ditunjukkan  oleh  masih terbukanya stomata. Pada pukul 13.00, lebar porus stomata semakin menurun. Penutupan stomata bertujuan mengurangi kehilangan air yang berlebihan (Taiz, 2002).
Luas Daun Hasil pengamatan luas daun menunjukkan  bahwa  luas  daun  terendah diperoleh  pada  perlakuan  B6  dengan  nilai 378,38  cm 2 sedangkan  luas  daun  tertinggi diperoleh  pada  perlakuan  B1  dengan  nilai
2468,60  cm 2 .  Adapun  luas  daun  pada perlakuan B7 dan B8 lebih tinggi dengan nilai 875,93  cm 2 dan  708,37  cm 2 daripada perlakuan  B9  dan  B10  dengan  nilai  563,50 cm 2 dan 556,17 cm 2 (Gambar 3). Daun pada tanaman sehat memiliki luas daun yang tinggi dibandingkan  dengan  daun  tanaman  yang terinfeksi virus gemini. Hal ini sejalan dengan hasil  penelitian  Sazali  &  Ali  (2017) menyatakan  bahwa  serangan  virus  akan mempengaruhi  pertumbuhan  tanaman  pada masa vegetatif dan generatif yang menyebabkan  menurunnya  pertumbuhan tanaman  akibat  terganggunya  aktivitas fisiologis  tanaman  dan  berkurangnya  hasil fotosintesis. Infeksi virus dapat menyebabkan berkurangnya fotosintesis akibat berkurangnya klorofil tiap daun, berkurangnya efisiensi klorofil atau berkurangnya luas daun tiap tanaman.
Gambar 3. Luas daun pada setiap perlakuan
Luas  daun  yang  diinokulasi  virus dengan  strain  lemah  dengan  1  dan  5  ekor serangga  vektor  yang  disusul  dengan  virus strain kuat (proteksi silang) pada perlakuan B7 dan B8 memiliki nilai tertinggi yaitu 875,93 cm 2 dan  708,37  cm 2 dibandingkan  dengan  luas daun yang diinokulasi virus dengan strain kuat dengan  1  dan  5  ekor  serangga  vektor  yang disusul  dengan  virus  strain  lemah  pada perlakuan  B9  dan  B10  yang  hanya  memiliki nilai 563,50 cm 2 dan 556,17 cm 2 (Gambar 3).
Hal  ini  sebanding  dengan  hasil  penelitian Ariyanti  (2012)  yang  menyatakan  bahwa tanaman  cabai  yang  terserang  virus  gemini memiliki  bentuk  daun  yang  tidak  normal (mengkerdil)  dan  bahkan  sebagiannya menggulung, terutama apabila terinfeksi pada awal fase vegetatif. Hal ini akan berpengaruh terhadap  indeks  luas  daun  dan  kandungan klorofil.  Daun  tanaman  yang  mengecil  dari ukuran  daun  normal  mengakibatkan  jumlah
fotosintat yang dihasilkan untuk pertumbuhan tanaman menurun.

## KESIMPULAN
Strain  lemah  mampu  menekan  laju infeksi strain kuat berdasarkan jumlah stomata dan luas daun sehingga teknik proteksi silang dapat  mengurangi  keparahan  penyakit. Jumlah stomata pada setiap gejala bervariasi tergantung  gejala  yang  ditimbulkan.  Daun yang bergejala berat maka jumlah stomatanya lebih sedikit dibandingkan dengan daun yang bergejala sedang dan ringan. Luas daun yang diinokulasi virus dengan strain lemah dengan 1  dan  5  ekor  serangga  vektor  yang  disusul dengan  virus  strain  kuat  (proteksi  silang) memiliki  nilai  tertinggi  yaitu  875,93  cm 2 dan 708,37  cm 2 dibandingkan  dengan  luas  daun yang  diinokulasi  virus  dengan  strain  kuat dengan  1  dan  5  ekor  serangga  vektor  yang disusul dengan virus strain lemah yang hanya memiliki  nilai  563,50  cm 2 dan  556,17  cm 2 . Daun  yang  terinfeksi  memiliki  bentuk  daun yang tidak normal sehingga akan berpengaruh terhadap  jumlah  stomata  dan  luas  daun tanaman.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  mengucapkan  terima  kasih kepada Kementerian Pendidikan,
Kebudayaan,  Riset,  dan  Teknologi  Republik Indonesia  melalui  skim  penelitian  dasar  TA 2023. Terima kasih juga disampaikan kepada Rektor Universitas Halu Oleo, Ketua Lembaga Penelitian dan Pengabdian kepada Masyarakat  (LPPM),  dan  Direktur  Program Pascasarjana Universitas Halu Oleo.

## DAFTAR PUSTAKA
Ariyanti, N. A. (2012). Mekanisme infeksi virus kuning  cabai  (Pepper  yellow  leaf  curl virus)  dan  pengaruhnya  terhadap proses fisiologi tanaman cabai.
Prosiding Seminar Biologi 9(1).
Akin, H. M. (2005). Kepatogenan satelit RNA yang  berasosiasi  dengan  Cucumber mosaic  virus  (CMV-SatRNA)  pada tanaman  cabai. Jurnal  Hama  dan Penyakit Tumbuhan Tropika , 5 (1), 37- 41.
Aranda, M. A., Fraile, A., & Garcia-Arenal, F. (1993). Genetic variability and evolution  of  the  satellite  RNA  of cucumber  mosaic  virus  during  natural epidemics. Journal of Virology , 67 (10), 5896 – 5901. https://doi.org/10.1128/jvi.67.10.5896- 5901.1993 BPS  Nasional.  (2022). Produksi  Cabai  Rawit di Indonesia . BPS  Sultra.  (2022). Produksi  Cabai  Rawit  di Sulawesi Tenggara . Hopkins,  W.  G.  (2008). Introduction  to  plant physiology . John Wiley & Sons.
Hussain,  F.,  &  Abid,  M.  (2011).  Pests  and diseases  of  chilli  crop  in  Pakistan:  a review. Int. J. Biol. Biotech., 8 (2): 325- 332.
Inoue-Nagata, A. K., Lima, M. F., & Gilbertson, R.  L.  (2016).  Uma  revisão  de geminiviroses  (begomoviroses)  em hortaliças  e  outras  culturas:  Situação atual  e  estratégias  de  manejo. Horticultura  Brasileira , 34 (1),  8 – 18. https://doi.org/10.1590/S0102- 053620160000100002 Mudmainah,  S.,  &  Purwanto,  P.  (2010). Deteksi  Begomovirus  pada  Tanaman Cabai Merah Dengan I-Elisa Test dan Teknik  PCR. Agroland:  Jurnal  Ilmu- ilmu Pertanian , 17 (2).
Taufik,  M.,  Gusnawaty,  H.  S.,  Syair,  S., Mallarangeng, R., Khaeruni, A., Botek, M.,  Hartono,  S.,  Aidawati,  N.,  & Hidayat,  P.  (2023).  Distribution  of yellow  curly  leaf  disease  in  chili plantations in Southeast Sulawesi and identification  of  the  causes. Jurnal Fitopatologi  Indonesia , 19 (3),  89-98. https://doi.org/10.14692/jfi.19.3.89-98 . Nada,  A.  K.,  &  Hidayat,  S.  H.  (2020).
Application of guano filtrate on infection of pepper yellow leaf curl virus in chilli plants. Jurnal
Fitopatologi
Indonesia , 16 (5),
191-199.
https://doi.org/10.14692/jfi.16.5 .
Nuryani, S. (2019). Struktur daun Cabai Besar ( Capsicum  Annuum L.  Var.  Taro) pasca  serangan  kutu  kebul  ( Bemisia tabaci genn.)  pada  masa  vegetatif.
Disertasi. UIN Raden Intan Lampung Pawar, S. S., Pharm, I. J., Sci, B., Bharude, N. V,  Sonone,  S.  S.,  Deshmukh,  R.  S., Raut,  A.  K.,  &  Umarkar,  A.  R. (2011). Chillies as food, spice and medicine: a perspective. International  Journal  of Pharmacy  and  Biological  Sciences ,
1 (3), 2230 – 7605.
Pramono, S. (2015). Intensitas dan Penyebaran  Virus  Kuning  Keriting Cabai  (Pepper  yellow  leaf  curl  virus). Prosiding  Seminar  Regional  Ilmu Penyakit  Tumbuhan (pp.  18-21).  PFI Komda lampung.
Revill, P. A., Ha, C. V., Porchun, S. C., Vu, M. T., & Dale, J. L. (2003). The complete nucleotide  sequence  of  two  distinct geminiviruses  infecting  cucurbits  in Vietnam. Archives of Virology , 148 (8),
1523 – 1541.
https://doi.org/10.1007/s00705-003- 0109-6
Rojas,  M.  R.  (1993).  Use  of  degenerate primers  in  the  polymerase  chain reaction  to  detect  whitefly-transmitted geminiviruses. Plant  Disease , 77 (4), 340. https://doi.org/10.1094/PD-77- 0340
Saleh, B. K., Omer, A., & Teweldemedhin, B.
(2018).  Medicinal  uses  and  health benefits  of  chili  pepper  ( Capsicum spp.): a review. MOJ Food Processing
& Technology , 6 (4).
https://doi.org/10.15406/mojfpt.2018.0 6.00183
Sari  M.  (2023).  Karakterisasi  biologi  dan efektivitas proteksi silang strain lemah terhadap  super  infeksi  strain  ganas pepper yellow leaf curl virus ( Pepylcv ) pada Cabai Rawit (Capsicum frutescens  L.) . Disertasi .  Universitas
Lampung.
Sayekti,  T.  W.  D.  A.,  Syukur, M.,  Hidayat,  S.
H., & Maharijaya, A. (2021). Morphological  response  and  genetic variability of four species of chili pepper (Capsicum  spp.)  under  infection  of pepper yellow leaf curl virus. Biodiversitas , 22 (11),  4758 – 4765. https://doi.org/10.13057/biodiv/d22110 7
Setyowati, A. D., Suranto, & Supyani. (2021). Disease  severity  of  geminivirus infection  on  the  chili  plants  at  Baki, Sukoharjo.
Proceeding Biology
Education Conference , 17 (1), 1 – 6.
Solahudin,  M.,  Pramudya,  B.,  Liyantono, Supriyanto,  &  Manaf,  R.  (2015). Gemini virus attack analysis in field of chili  ( Capsicum  Annuum L.)  using aerial  photography  and  bayesian segmentation method. Procedia Environmental  Sciences , 24 (2015),
254 – 257.
https://doi.org/10.1016/j.proenv.2015.0 3.033 Taiz, L.Z. E. (2002). Plant physiology 2nd ed Sinauer Associates .
Temaja,  I.  G.  R.  M.,  Selangga,  D.  G.  W., Phabiola, T. A., Khalimi, K., & Listihani. (2022). Relationship between viruliferous Bemisia  tabaci population and  disease  incidence  of  Pepper yellow leaf curl Indonesia virus in chili pepper. Biodiversitas , 23 (10),  5360 – 5366. https://doi.org/10.13057/biodiv/d23104
6
Wilyus,  W.,  Novalina,  N.,  &  Nurdiansyah,  F. (2022).  Study  the  integrated  pest management  on  chili  cultivation  to control Aphis  gossypii and Bemisia tabaci . Jurnal  Lahan  Suboptimal,
11 (2),216 – 222.
https://doi.org/10.36706/jlso.11.2.2022 .579