## INDONESIA

## Pengaruh Jenis Pelarut Terhadap Kadar Senyawa Metabolit Sekunder dan Aktivitas Antioksidan Ekstrak Kulit Batang Lino (Grewia koordersiana Burret)
Lodowik Landi Pote * , Maximus M. Taek , Anggelinus Nadut, Gertreda Latumakulita
Program studi kimia, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Katolik Widya Mandira Kupang
*alamat email korespondensi: lodopote@ymail.com

## Abstract
The process of extracting secondary metabolite compounds from plants through extraction. One  of  factors  that  influences  the  success  of  extraction  is  the  type  of  solvent  used.  This study  aims  to  determine  the  effect  of  solvent  type  on  the  levels  of  secondary  metabolite compounds and the antioxidant activity of Lino (G. koordersiana Burret) bark extract. This research  began  with  taking  lino  bark,  extraction,  phytochemical  screening,  content analysis including levels of alkaloids, flavonoids, phenolics, triterpenoids, saponins and tannins as well as antioxidant activity tests. The research results showed that the yields for ET,  EM,  EA  and  EH  extracts  were  42.15%,  41.65%,  0.98%  and  0.62%  respectively. Phytochemical test results of ET and EM extracts contain alkaloids, flavonoids, phenolics, triterpenoids,  saponins  and  tannins.  Meanwhile,  EA  extract  contains  phenolics, triterpenoids and tannins and EH extract contains triterpenoids. The results of analysis of the  levels  of  secondary  metabolite  compounds  in  ET,  EM,  EA  and  EH  extracts  showed different results. The antioxidant activity test results for each extract showed different IC50 values. Antioxidant activity of ET, EM, and EA extracts has antioxidant activity in the very strong category. Meanwhile, EH extract has antioxidant activity in the inactive category. The results showed that the type of solvent affected the levels and antioxidant activity of secondary metabolite compounds from lino extract (G. koordersiana Burret).
Keyword: Lino (Grewia koordersiana Burret), solvent, extract, secondary metabolites, and antioxidant activity.

## Abstrak
Proses pengambilan senyawa metabolit sekunder pada tumbuhan melalui ekstraksi. Salah satu faktor yang mempengaruhi keberhasilan ekstraksi yakni jenis pelarut yang digunakan. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh jenis pelarut terhadap kadar senyawa metabolit sekunder dan aktivitas antioksidan ekstrak kulit batang Lino (G. koordersiana Burret). Penelitian ini diawali dengan pemgambilan kulit batang lino, ekstraksi, skrining fitokimia, analisis kadar meliputi kadar alkaloid, flavanoid, fenolat, triterpenoid, saponin dan  tanin  serta  uji  aktivitas  antioksidan.  Hasil  penelitian  diperoleh  rendemen  untuk ekstrak ET, EM, EA dan EH berturut-turut adalah 42,15%, 41,65%, 0,98% dan 0,62%. Hasil  uji  fitokimia  ekstrak  ET  dan  EM  mengandung  alkaloid,  flavanoid,  fenolat, triterpenoid, saponin dan tanin. Sedangkan ekstrak EA mengandung fenolat, triterpenoid dan  tanin  serta  ekstrak  EH  mengandung  triterpenoid.  Hasil  analisis  kadar  senyawa metabolit sekunder ekstrak ET, EM, EA, dan EH menunjukkan hasil yang berbeda. Hasil uji  aktivitas  antioksidan  masing-masing  ekstrak  menunjukkan  nilai    IC 50 yang  berbeda. Aktivitas  antioksidan  ekstrak  ET,  EM,  dan  EA  memiliki  aktivitas  antioksidan  dengan kategori  sangat  kuat.  Sedangkan  ekstrak  EH  memiliki  aktivitas  antioksidan  dengan kategori  tidak  aktif.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  jenis  pelarut  berpengaruh terhadap kadar dan aktivitas antioksidan senyawa metabolit sekunder dari ekstrak lino (G. koordersiana Burret).
Kata Kunci: Lino (Grewia koordersiana Burret), pelarut, ekstrak, metabolit sekunder, dan aktivitas antioksidan.

## I. PENDAHULUAN
Tumbuhan mengandung senyawa metabolit  sekunder  tergantung  pada  jenis tumbuhan. Senyawa metabolit sekunder yang terkandung  pada  tumbuhan  terdiri  dari alkaloid, terpenoid, steroid, flavonoid, saponin dan tanin. Hal inilah yang menyebabkan  masyarakat  Indonesia  banyak memanfaatkan  tumbuhan  berkhasiat  obat untuk pengobatan secara tradisional berbagai macam penyakit [1].
Salah  satu  tumbuhan  yang  berkhasiat untuk  pencegahan  berbagai  penyakit  adalah tumbuhan lino (Grewia koordersiana Burret). Tumbuhan lino dimanfaat oleh beberapa etnis di  provinsi  Nusa  Tenggara  Timur  (NTT) untuk  pengobatan  berbagai  jenis  penyakit yakni etnis sumba memanfaatkan bagian kulit kayu untuk pengobatan luka, bisul, dan etnis atoni memanfaatkan rebusan kulit kayu untuk menyegar badan setelah melahirkan [2] serta etnis  tetun  menggunakan  rebusan  akar  untuk

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
menyembuhkan limpa bengkak (splenomegali) akibat penyakit malaria[3].
Proses pengambilan senyawa metabolit sekunder  pada  tumbuhan  dapat  dilakukan melalui proses ekstraksi. Ekstraksi merupakan salah satu proses untuk memisahkan zat atau senyawa dengan menggunakan pelarut tertentu[4]. Metode ekstraksi sangat berpengaruh  terhadap  jenis  dan  kualitas senyawa  yang  dihasilkan  karena  setiap metode  ekstraksi  memiliki  perbedaan  suhu, tekanan  dan  kelarutan  senyawa  metabolit sekunder dalam ekstrak. Keberhasilan ekstraksi  dapat  dipengaruhi  oleh  beberapa faktor  yakni  jenis  pelarut,  perbandingan jumLah pelarut, ukuran partikel, suhu, waktu dan  metode  ekstraksi[5].  Semakin  besar perbandingan pelarut dan semakin lama waktu ekstraksi,  semakin  banyak  ekstrak  yang diperoleh[6].  Selain  itu  jumLah  pelarut berpengaruh terhadap perolehan hasil ekstraksi, karena semakin banyak pelarut yang digunakan  dalam  ekstraksi  semakin  banyak ekstrak yang diperoleh[7].
Selain  metode  ekstraksi,  pemilihan pelarut  dalam  proses  ekstraksi  sangat mempengaruhi  jumLah  senyawa  aktif  yang terkandung dalam ekstrak. Senyawa metabolit sekunder  pada  tumbuhan  akan  larut  dalam pelarut  sesuai  dengan  tingkat  polaritas senyawa metabolit sekunder. Pelarut memiliki tiga  sifat  tingkat  kelarutan  yakni  nonpolar,
semi  polar,  dan  polar  [8].  Tingkat  kepolaran pelarut  akan  mempengaruhi  kandungan senyawa  metabolit  sekunder  yang terekstrak. Jenis dan jumLah pelarut dapat mempengaruhi  kandungan  senyawa  aktif yang  terekstrak  berdasarkan  prinsip  like dissolve  like,  dimana  senyawa  yang  bersifat polar  akan  larut  dalam  pelarut  polar  dan senyawa  yang  bersifat  nonpolar  akan  larut dalam pelarut nonpolar [9].
Kandungan senyawa metabolit sekunder  pada  tumbuhan  tergantung  pada jenis  tumbuhan.  Jenis  senyawa  metabolit sekunder  yang  dimetabolisme  tergantung pada  faktor  biogenetik  tumbuhan  tersebut. Senyawa  kimia  tersebut  seperti  alkaloid, flavonoid,  triterpenoid,  fenolat,  tanin,  dan saponin  [10].  Proses  pengambilan  senyawa metabolit  sekunder  pada  tumbuhan  melalui ekstraksi  merupakan  metode  yang  dapat berpengaruh  terhadap  kandungan  senyawa metabolit sekunder yang terekstrak. Selain itu, polaritas  dari  pelarut  sangat  berpengaruh terhadap  kadar  senyawa  metabolit  sekunder yang  dihasilkan  dari  proses  ekstraksi.  Kadar senyawa metabolit sekunder sangat dipengaruhi  oleh  tingkat  kepolaran  pelarut [11].
Tumbuhan mengandung senyawa metabolit sekunder seperti flavonoid, alkaloid, terpenoid, steroid dan lain-lain yang memiliki aktivitas biologi. Senyawa flavanoid

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
telah  banyak  diisolasi  dari  berbagai  macam tumbuhan  dan  memiliki  aktivitas  biologi seperti  sitotoksik  terdapat  sel  kanker,  anti inflammantory,  anti  bakteri,  anti  jamur  dan menghambat pelepasan histamin [12].
Senyawa antioksidan alami banyak ditemukan pada tumbuhan seperti pada daun, bunga dan buah  [13].
Uji  kuantitatif  aktivitas  antioksidan menggunakan  metode  DPPH  (1,1-  difenil-2- pikrilhidrazil) untuk mengukur daya peredaman ekstrak (ekstrak) terhadap radikal bebas  DPPH.  Prinsip  kerja  metode  DPPH adalah  adanya  atom  hidrogen  dari  senyawa antioksidan  yang  berikatan  dengan  elektron bebas  pada  senyawa  radikal.  DPPH  akan bereaksi dengan atom hidrogen dari senyawa peredaman  radikal  bebas  membentuk  DPPH yang  lebih  stabil  [14].  Aktivitas  antioksidan diuji  dengan  metode  DPPH  yang  dinyatakan dengan nilai IC50 dengan satuan µg/mL. Nilai IC50  merupakan  nilai  yang  menunjukan kemampuan  penghambatan  proses  oksidasi sebesar 50% suatu konsentrasi ekstrak (ppm).
Aktivitas  antioksidan  tumbuhan  Lino (G.  koordersiana  Burret)  belum  banyak diteliti,  sehingga  tujuan  penelitian  ini  adalah untuk pengaruh jenis pelarut (metanol, etanol, etil  asetat  dan  n-heksan)  terhadap  kadar senyawa  metabolit  sekunder  dan  aktivitas antioksidan  ekstrak  kulit  batang  Lino  (G. koordersiana Burret).

## II. METODELOGI

## 2.1 Alat dan Bahan
Alat  yang  digunakan  adalah  timbangan analitik ,  spektrofotometer  UV-Vis  Thermo Scientific  Genesys  10S,  rotary  evaporator Buchi  type  R210 ,  tabung  reaksi,  labu  ukur, oven, desikator, corong Buchner, dan blender. Bahan  yang  digunakan  adalah  bahan  kulit batang  tumbuhan  Lino  ( G.  koordersiana Burret ), metanol (Merck), etil asetat (Merck), kloroform (Merck), n-heksan (Merck), etanol (Merck),  serbuk  Mg,  HCL  pekat  (Merck), NaOH (Merck), H 2 SO 4 pekat (Merck), FeCl 3 1  %  (Merck),  Pereaksi  Mayer,  Pereaksi Dragendorff, AlCl 3 (Merck), kuarsetin, kafein, kolesterol,  kalium  asetat  (Merck),  Na 2 CO 3 (Merck),  larutan  dapar  fosfat,  larutan Bromocresol green (BCG), asam tanat, DPPH dan akuades. Ekstrak digunakan adalah serbuk kulit batang tumbuhan lino ( G. koordersiana Burret )  yang  diambil  dari  daerah  Camplong Kecamatan Fatuleu, Kabupaten Kupang.

## 2.2 Maserasi Ekstrak
Sampel kulit batang lino ditimbang sebanyak 300  g  untuk  dimaserasi  dengan  pelarut (metanol,  etanol,  etil  asetat  dan  n-heksan) sebanyak 1 L selama 2 x 24 jam. Setelah 2 x 24  jam,  kemudian  larutan  tersebut  disaring menggunakan corong vakum. Residu dimaserasi kembali dengan pelarut sebanyak 1 L dengan variasi pelarut yang sama (metanol,

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
etanol,  etil  asetat  dan  n-heksan).  Masing- masing  ekstrak  yang  diperoleh  selanjutnya diuapkan  dengan  menggunakan vacuum rotary  evaporator (dievoporasi)  pada  suhu 45 o C  sehingga  diperoleh  ekstrak  kental metanol  (EM),  etanol  (ET),  etil  asetat  (EA) dan n-heksan(EH).

## 2.3 Uji Fitokimia

## a). Uji Alkaloid
Uji  alkaloid  dilakukan  untuk  masing-masing ekstrak adalah uji Dragendroff, uji Mayer, dan uji Wagner. Ekstrak ditimbang sebanyak 0,1 g dan  dilarutkan  dalam  10  mL  pelarut kloroform.  Ekstrak    kloroform  disaring,  dan diambil  filtrat.  Uji  Dragendroff  dilakukan dengan  mengambil  2  mL  filtrat  ditambah dengan  1  mL  reagen  Dragendroff.  Hasil positif  adanya  alkaloid  ditandai  dengan terbentuknya  endapan  merah.  Untuk  uji Mayer  diambil  2  mL  filtrat  dan  ditambah dengan  1  mL  reagen  Mayer.  Hasil  positif adanya alkaloid ditandai dengan terbentuknya endapan putih. Dan untuk uji Wagner diambil 2  mL  filtrat  dan  ditambah  dengan  1  mL
Wagner. Hasil positif adanya alkaloid ditandai dengan terbentuknya endapan coklat.

## b). Uji Flavonoid
Uji flavonoid dilakukan untuk masing-masing ekstrak  dengan  ditimbang  ekstrak  sebanyak 0,1  g  dan  dilarutkan  dalam  10  mL  metanol
kemudian dibagi ke dalam tiga tabung reaksi. Tabung  pertama  digunakan  sebagai  tabung kontrol,  tabung  kedua  dan  ketiga  berturut- turut ditambahkan 3 mL NaOH, 5 tetes H 2 SO 4 pekat, dan serbuk Mg-HCl pekat. Warna pada masing-masing  tabung  dibandingkan  dengan tabung kontrol. Hasil positif adanya flavonoid ditandai  dengan  perubahan  warna  menjadi merah atau orange. Dan positif adanya fenolat ditandai dengan  warna hijau kecoklatan.

## c). Uji Saponin dan Tanin
Uji saponi dan tanin dilakukan untuk masing- masing ekstrak. Ekstrak ditimbang  sebanyak 0,1 g dan dilarutkan dengan aquades sebanyak 15 mL kemudian dipanaskan selama 5 menit. Selanjutnya  disaring  dan  filtratnya  diambil sebanyak  10  mL  dan  dimasukkan  kedalam tabung  reaksi.  Larutan  kemudian  di  kocok. Hasil positif adanya saponin ditandai dengan terbentuknya busa/buih. Sedangkan untuk uji tanin;  filtrat  ditambahkan  FeCl 3 1%.  Hasil positif  adanya  tanin  ditandai  dengan  warna hijau, biru, atau hitam.

## d). Uji Terpenoid
Uji terpenoid dilakukan untuk masing-masing ekstrak. Ekstrak ditimbang sebanyak 1 g dan ditambahkan  20  mL  etanol,  2  mL  kloroform dan  3  mL  H 2 SO 4 pekat.  Hasil  positif  adanya terpenoid  ditandai  dengan  perubahan  warna larutan menjadi merah.

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
2.4  Penetapan  Kadar  Senyawa  Metabolit
Sekunder Ekstrak Tumbuhan Lino (G. koordersiana Burret)
a). Penetapan Kadar Flavonoid Total

## Pembuatan kurva standar kuarsetin
Ditimbang  sebanyak  25  mg  baku  standar kuersetin dan dilarutkan dalam 25 mL etanol. Larutan  stok  1000  ppm  di  pipet  1  mL, dimasukkan  ke  dalam  labu  ukur  10  mL, kemudian  diecerkan  dengan  etanol  sampai tanda  batas,  sehingga  diperoleh  konsentrasi 100  ppm.  Dari  larutan  standar  kuersetin  100 ppm,  kemudian  dibuat  beberapa  konsentrasi yaitu 5 ppm, 10 ppm, 15 ppm, 20 ppm dan 25 ppm. Dari masing-masing konsentrasi larutan standar  kuersetin  dipipet  1  mL.  Kemudian ditambahkan 1 mL AlCl 3 2% dan 1 mL kalium asetat.  Ekstrak  diinkubasi  selama  satu  jam pada  suhu  kamar.  Pengukuran  absorbansi blanko  dan  standar  pada  panjang  gelombang maksimum 435 nm dengan Spektrofotometer UV-Vis.

## Penetapan Kadar Flavonoid Total Ekstrak Tumbuhan Lino (G.  koordersiana Burret)
Penetapan  kadar  flavonoid  total  dilakukan untuk masing-masing ekstrak dengan ditimbang 0,05 g ekstrak dan dilarutkan dalam 10 mL etanol. Dari larutan tersebut dipipet 1 mL  kemudian  ditambahkan  1  mL  larutan AlCl 3 2%  dan  1  mL  kalium  asetat  120  mM. Ekstrak diinkubasi selama satu jam pada suhu kamar.  Selanjutnya  diukur  absorbansi  pada
panjang  gelombang  maksimum  435  nm dengan Spektrofotometer UV-Vis [15].

## b). Penetapan Kadar Fenolat Total
Pembuatan Kurva Kalibrasi Standar Asam Galat
Larutan standar 1000 ppm dibuat dengan cara ditimbang  10  mg  asam  galat  dan  dilarutkan dengan etanol p.a hingga volume akhir 10 mL. Dari larutan stok 1000 ppm dipipet sebanyak 2,5  mL  dan  diencerkan  dengan  etanol  p.a hingga  volume  25  mL  sehingga  dihasilkan konsentrasi  100  ppm.  Dari  larutan  100  ppm dibuat seri konsentrasi 10, 20, 30, 40 dan 50 ppm. Selanjutnya diambil sebanyak 5 mL dari masing-masing  larutan  seri  konsentrasi  dan ditambahkan 0,4 mL pereaksi Folin- Cioceltaeu, lalu dikocok dan dibiarkan selama 4-8  menit.  Kemudian  ditambahkan  3  mL larutan  Na 2 CO 3 7%  dan  diecerkan  dengan akuades  hingga  volume  10,0  mL.  larutan dikocok  hingga  homogen  dan  didiamkan selama  2  jam  pada  suhu  kamar,  kemudian diukur absorbansinya pada panjang gelombang  maksimal  744,8  nm  dengan Spektrofotometer UV-Vis.
Penetapan  Kadar  Fenolat  Total  Ekstrak Tumbuhan Lino (G.  koordersiana Burret) Penetapan kadar fenolat total dilakukan untuk masing-masing  ekstrak  dengan  ditimbang sebanyak    0,05  g  ekstrak  dan  dilarutkan dengan  etanol  p.a  dan  ditambahkan  0,4  mL

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
pereaksi Folin-Cioceltaeu lalu  dikocok  dan dibiarkan  sekitar  4-8  menit.  Setelah  itu, ditambahkan  3  mL  larutan  Na 2 CO 3 7%, dikocok  hingga  homogen  dan  diencerkan dengan  akuades  hingga  volume  10  mL. Selanjutnya,  campuran  didiamkan  selama  2 jam  pada  suhu  kamar  kemudian  diukur absorbansinya  pada  panjang  gelombang maksimal 744,8 nm dengan Spektrofotometer UV-Vis [16].

## c). Penetapan Kadar Alkaloid Total Pembuatan Kurva Standar Kafein
Sebanyak 0,25 gram kafein dilarutkan dengan aquades panas, lalu dimasukkan ke dalam labu ukur  250  mL  agar  didapatkan  konsentrasi 1000  ppm.  Dari  larutan  standar  kafein  1000 ppm dipipet masing-masing 0,2; 0,4; 0,6; 0,8; dan 1 mL dimasukkan ke dalam labu ukur 10 mL, kemudian diencerkan sampai tanda batas, sehingga diperoleh larutan standar dengan seri konsentrasi  20;  40;  60;  80;  dan  100  ppm Kemudian  diukur  absorbansi  pada  panjang gelombang  273  nm  dengan  menggunakan spektrofotometer UV-Vis.
Penetapan  Kadar  Alkaloid  Total  Ekstrak Lino (G.  koordersiana Burret)
Penetapan  kadar  alkaloid  total  dilakukan untuk masing-masing ekstrak dengan ditimbang  sebanyak  0,5  gram  ekstrak dilarutkan  ke  dalam etanol  sebanyak  50 mL. kemudian  dipipet  5  mL  larutan,  lalu
ditambahkan  dapar  posfat  dan  Larutan Bromocresol green (BCG). Kemudian diekstraksi  dengan  kloroform  sebanyak  tiga kali  menggunakan  vortex.  Diambil  fase kloroform  dan  dimasukkan  ke  dalam  labu ukur 10 mL dan diencerkan kloroform sampai tanda  batas.  Larutan  di  ukur  serapan  pada panjang gelombang 274 nm dengan menggunakan spektrofotometer UV-Vis [17].

## d). Penetapan Kadar Tanin Total Pembuatan larutan standar Asam tanat 1000 ppm
Sebanyak  10  mg  asam  tanat,  kemudian dilarutkan dengan akuades dalam gelas kimia. Selanjutnya  dimasukkan  ke  dalam  labu  ukur 10 mL dan dienderkan akuades sampai tanda batas.  Dari  larutan  induk  1000  ppm  dibuat larutan  standar  dengan  seri  konsentrasi  0,  5, 10, 15, 20, dan 25 ppm.

## Pembuatan Kurva Standar Asam Tanat
Larutan  standar  dari  masing-masing  seri konsentrasi  0,  5,  10,  15,  20,  dan  25  ppm diambil  masing-masing  sebanyak  1  mL, selanjutnya  dicampur  dengan  1  mL  reagen Folin-Cioceltaeu . Campuran dibiarkan selama  3  menit  kemudian  ditambah  1  mL larutan jenuh Na 2 CO 3 dan di simpan di tempat gelap  selama  30  menit  untuk  proses homogenisasi.  Setelah  itu,  larutan  di  ukur panjang gelombang 760 nm dengan menggunakan spektrofotometer UV-Vis.

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
Penetapan  Kadar  Tanin  Total  Ekstrak Lino (G.  koordersiana Burret)
Penetapan  kadar  tanin  total  dilakukan  untuk masing-masing  ekstrak  dengan  ditimbang sebanyak 0,05 g ekstrak, kemudian diekstraksi dengan  10  mL  dietil  eter  selama  20  jam, kemudian disaring dan residu yang diperoleh dididihkan dengan 100 mL akuades selama 2 jam,  kemudian  didinginkan  dan  disaring. Ekstrak yang diperoleh dimasukkan ke dalam labu  ukur  100  mL  dan  diencerkan  dengan akuades sapai tanda batas.  Sebanyak 0,1 mL ekstrak  ditambahkan    dengan  0,1  mL  reagen Folin-Cioceltaeu dan  divortex,  selanjutnya ditambahkan  2  mL  Na 2 CO 3 jenuh  dan divortex,  selanjutnya  diinkubasi  selama  30 menit pada suhu kamar. Larutan di ukur pada panjang gelombang 760 nm dengan menggunakan spektrofotometer UV-Vis [18].

## e). Penetapan Kadar Saponin Total Pembuatan Kurva Standar Saponin
Larutan  standar  saponin  1000  ppm  di  buat dengan menimbang 10 mg saponin, kemudian ditambahkan air sebanyak 5 mL dan ekstraksi dengan  vortex  selama  5  menit.  Selanjutnya ditambahkan  50  µL  anisaldehid  dan  kocok. Larutan  diamkan  selama  10  menit  kemudian tambahkan  2  mL  asam  sulfat  50%. Selanjutnya  larutan  dipanaskan  di  atas penangas  air  pada  suhu  60 o C  selama  10 menit,  kemudian  larutan  dimasukkan  ke
dalam  labu  ukur  10  mL  dan  diencerkan dengan  akuades  sampai  tanda  batas.  Seri konsentrasi  larutan  standar  saponin  dibuat dengan  cara  memipet masing-masing  larutan mulai dari 200; 100; 50; 25; 12,5; 6,25 µL dari larutan  standar  saponin  1000  ppm  dan dimasukkan  ke  dalam  labu  ukur  10  mL  dan diencerkan  dengan  akuades  sampai  tanda batas.  Selanjutnya  masing-masing  larutan diukur serapan pada panjang gelombang 435 nm  dengan  menggunakan  spektrofotometer UV-Vis.
Penetapan  Kadar  Saponin  Total  Ekstrak Lino (G.  koordersiana Burret)
Penetapan  kadar  saponin  total  dilakukan untuk masing-masing ekstrak dengan ditimbang  0,1  g  ekstrak  dan  ditambahkan  2 mL H 2 SO 4 25%. Autoclave selama 120 menit pada  suhu  110 o C.  Selanjutnya  diekstraksi dengan eter dan saring. Filtrat keringkan dan ditambahkan  air  1  mL  dan  ekstraksi  dengan vortex selama 5 menit. Selanjutnya ditambahkan 50 µl anisaldehid, di kocok dan didiamkan  selama  10  menit.  Kemudian ditambahkan  2  mL  asam  sulfat  50%  dan dipanaskan di atas penangas air pada suhu 60 o C  selama  10  menit.  Kemudian  larutan dimasukkan  ke  dalam  labu  ukur  10  mL  dan diencerkan  dengan  air  sampai  tanda  batas. Larutan    di  ukur  serapan  pada  panjang gelombang  435  nm  dengan  menggunakan spektrofotometer UV-Vis [1].

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
f).  Penetapan  Kadar  Triterpenoid  Total

## Ekstrak Lino (G.  koordersiana Burret)
Penetapan kadar Triterpenoid total dilakukan untuk masing-masing ekstrak dengan ditimbang sebanyak 50 mg (wi) ekstrak kering dan direndam dalam 25 mL etanol selama 24 jam.  Ekstrak  disaring,  filtrat  diekstraksi dengan  30  mL  eter  menggunakan  corong pisah.  Ekstrak  eter    dipisahkan  dalam  botol kaca  yang  telah  ditimbang  sebelumnya  dan menunggu  hingga  benar-benar  kering  (wf). Eter  diuapkan dan rendemen (%) kandungan total terpenoid [19] dengan rumus:
100 (%) x Wi Wf Wi total terpenoid Kadar − = (1)

## 2.5 Uji  Aktivitas  Antiosidan  Ekstrak
Tumbuhan  Lino  (G.  koordersiana

## Burret)
Pembuatan  larutan  induk  DPPH  0,1  mM dengan  ditimbang  seberat  10  mg  serbuk DPPH  dalam  keadaan  gelap,  kemudian dilarutkan dengan sedikit etanol p.a, kemudian dimasukkan ke dalam labu ukur 250 mL dan diencerkan dengan etanol p.a sampai tanda batas.
Uji aktivitas antioksidan masing-masing ekstrak dibuat dengan cara ditimbang seberat 0,1  gram,  kemudian  ke  dalam labu  ukur 100 mL  dan  diencerkan  etanol  p.a  sampai  tanda batas.  Dari  larutan  1000  ppm  dibuat  larutan dengan  seri  konsentrasi  25  ppm,  50  ppm,  75
ppm,  dan  100  ppm.  Pembanding  adalah vitamin  C  dengan  cara  ditimbang  seberat  10 mg  kemudian  dilarutkan  dengan  etanol sampai  100  mL.  Kemudian  dibuat  larutan dengan seri konsenstrasi 1,25 ppm; 2,5 ppm; 5  ppm;  dan  10  ppm.  Kemudian  masing- masing  larutan  uji  diambil  4  mL  dan ditambahkan 1 mL larutan DPPH dimasukkan ke  dalam  masing-masing  tabung  reaksi  dan diinkubasi selama 30 menit. Kemudian diukur serapan pada panjang gelombang maksimum yaitu 516 nm dengan menggunakan spektrofotometer  UV-Vis.  Kontrol  (blanko) adalah menggunakan etanol. Aktivitas penangkap radikal bebas atau persen inhibisi dapat dihitung menggunakan rumus [20]:
% 100 % x kontrol absorbansi sampel absorbansi kontrol
Absorbansi Inhibisi − = (2)

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1. Rendemen  Ekstrak  Kulit  Batang Lino (G. koordersiana Burret)
Ekstraksi  kulit  batang  lino  ( G.  koordersiana Burret) dilakukan  dengan  cara  maserasi dengan  variasi  pelarut.  Variasi  pelarut dilakukan  untuk  mengetahui  pengaruh  jenis pelarut terhadap kelarutan senyawa metabolit sekunder yang terkandung dalam kulit batang tumbuhan  lino  ( G.  koordersiana  Burret ). Masing-masing ekstrak yang diperoleh memiliki  rendemen  yang  dapat  lihat  pada Tabel 1.

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
Tabel  1. Rendemen  Ekstrak  Kulit  Batang Lino ( G. koordersiana Burret )
Ekstrak Massa ekstrak (g) Massa ekstrak (g) Rendemen (%) EM 300 124,97 41,65 ET 300 126,47 42,15 EA 300 2,96 0,98 EH 300 1,88 0,62
Berdasarkan data pada Tabel 1 menunjukkan bahwa  pelarut  etanol  memiliki  rendemen 41,65%  dan  metanol  42,15%.  Sedangkan pelarut  etil  asetat  dan  n-heksan    dengan rendemen  0,98%  dan  0,62%.  Hal  ini  dapat dijelaskan  bahwa  pelarut  etanol  dan  metanol merupakan pelarut polar yang dapat mengekstrak  senyawa  metabolit  sekunder lebih banyak dibandingkan dengan pelarut etil asetat  dan  n-heksan  yang  merupakan  pelarut semi  polar  dan  non  polar.  Hal  ini  dijelaskan bahwa pelarut etanol lebih efisien dibandingkan  dengan  metanol  dan  etil  asetat [21].  Hal  tersebut  dijelaskan  bahwa  jenis pelarut dapat berpengaruh terhadap hasil yang diperoleh.  Kelarutan  senyawa  aktif  dapat dipengaruhi oleh pelarut yang digunakan [22]. Hal  serupa  dijelaskan  bahwa  jenis  pelarut dapat  berpangaruh  terhadap  rendemen  yang diperoleh [23]. Hal tersebut dijelaskan bahwa pelarut semakin polar pelarut, semakin banyak
senyawa polar yang terekstrak [24]. Selain itu, rendemen  yang  diperoleh  tergantung  pada sifat kelarutan senyawa bioaktif yang terdapat dalam  ekstrak  [25].  Hal  tersebut  dijelaskan bahwa  penggunaan  jenis  pelarut  dengan polaritas berbeda dapat berpengaruh terhadap rendemen [26].

## 3.2. Hasil  Uji  Fitokimia  Ekstrak  Kulit Batang Lino (G. koordersiana Burret)
Hasil  uji  fitokimia  ekstrak  kulit  batang  Lino ( G.  koordersiana  Burret )  dengan  pelarut metanol,  etanol,  etil  asetat  dan  n-heksan seperti pada Tabel 2.
Berdasarkan Tabel  2 , ekstrak  ET  dan  EM mengandung  senyawa  metabolit  sekunder alkaloid,  flavanoid,  fenolat,  triterpenoid, saponin  dan  tanin.  Sedangkan  ekstrak  EA mengandung  senyawa  metabolit  sekunder fenolat,  triterpenoid  dan  tanin  serta  ekstrak EH mengandung senyawa metabolit sekunder triterpenoid.
Hasil uji alkaloid untuk ekstrak ET dan EM positif adanya alkaloid ditandai terbentuknya  endapan  putih  pada  uji  Mayer, endapan  merah  jingga  pada  uji  Dragendorff, dan endapan coklat pada uji Wagner.
Hal  ini  dijelaskan  bahwa  adanya  pasangan elektron  bebas  pada  nitrogen  penyusun senyawa  alkaloid  dapat  membentuk  ikatan kovalen koordinat dengan-
Tabel 2 . Hasil Uji Fitokimia Ekstrak Kulit Batang Lino ( G. koordersiana Burret ) Senyawa Pereaksi Positif menurut pustaka [27] * Ekstrak EM ET EA EH Alkaloid - Mayer - Wagner
- Dragendorff - Endapan putih/Keruh - Endapan coklat - Endapan merah Jingga Positif Positif Positif Positif Positif Positif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Tanin FeCl 3 1% Hijau kehitaman/Biru kehitaman Positif Positif   Positif Negatif Fenolat FeCl 3 1% Hijau kecoklatan Positif Positif Positif Negatif Flavonoid Logam Mg, HCl pekat Merah atau Oranye Positif Positif Negatif Negatif Triterpenoid Lieberman Bouchard Merah atau Ungu Positif Positif Positif Positif Saponin Aquades Terbentuk busa/buih Positif Positif Negatif Negatif
ion  logam  K + kalium  tetraiodomerkurat  (II) dari  reagen  Wagner,  sehingga  terbentuk kompleks  kalium-alkaloid  yang  berwarna coklat. Dan uji Mayer terbentuk endapan putih pada  ekstrak  etanol  dan  metanol  karena terbentuknya kompleks kalium-alkaloid. Kompleks  tersebut  terjadinya  karena  adanya reaksi  atom  nitrogen  yang  terdapat  pada alkaloid  dengan  ion  logam  K + dalam  kalium tetraiodomerkurat(II).  Hal  tersebut  dapat dijelaskan  bahwa  pasangan  elektron  bebas pada atom nitrogen alkaloid dapat membentuk ikatan  kovalen  koordinat  dengan  ion  logam K + .  Sedangkan  uji  alkaloid  menggunakan
reagen  Dragendorff  yaitu  terbentuk  endapan merah-Jingga. Reagen Dragendorff mengandung  garam  bismut  nitrat.  Garam bismut  mengandung  ion  Bi 3+ yang  mudah terhidrolisis membentuk menjadi ion bismutil (BiO + ).  Reaksi  yang  terjadi  antara  Ion  Bi 3+ dari  bismuth  nitrat  dengan  kalium  iodida membentuk endapan hitam Bismut (III) iodida yang  larut  ke  dalam  kalium  iodida  berlebih membentuk  kalium  tetraiodobismutat.  Pada uji  alkaloid  dengan  reagen  dragendorff, nitrogen  digunakan  untuk  membentuk  ikatan kovalen  koordinat  dengan  K + membentuk
endapan    kalium-alkaloid  dan  [BiI 4 ] - warna merah-jingga [28].
Hasil identifikasi pada ekstrak ET, EM, dan  EA  adanya  tanin  dan  fenolat  ditandai terbentuknya warna hijau kehitaman dan hijau kecoklatan  yang  kuat  pada  penambahan pereaksi  FeCl 3 1%.  Hal  ini  dapat  dijelaskan Warna hijau kehitaman untuk tanin dan hijau kecoklatan  untuk  fenolat  yang  terbentuk disebabkan  oleh  tanin  dan  fenolat  yang bereksi dengan ion Fe 3+ membentuk senyawa kompleks [29].
Ekstrak ET dan EM positif mengandung saponin.  Hal  ini  dapat  dijelaskan  bahwa senyawa saponin  mengandung glikosida yang mempunyai  kemampuan  membentuk  buih dalam  air.  Senyawa  tersebut  memiliki  gugus polar  dan  nonpolar  bersifat  aktif  permukaan sehingga  saponin  dapat  membentuk  misel. Pada  struktur  misel  gugus  polar  menghadap keluar karena mengikat air (hidrofil) sedangkan gugus nonpolar (hidrofob) [30].
Hasil  positif  triterpenoid  ekstrak  ET, EM, EA dan EH dengan terbentuknya warna merah atau ungu pada ekstrak tersebut. Hal ini dijelaskan  bahwa  terbentuknya  warna  merah atau  ungu  tersebut  karena  atom  C  pada anhidrida membentuk karbokation.
Karbokation  selanjutnya  bereaksi  dengan atom  O  pada  gugus  -OH  pada  senyawa triterpenoid [31].
Hasil  uji  fitokimia  ekstrak  kulit  batang  Lino ( G.  koordersiana  Burret )  dengan  pelarut metanol,  etanol,  etil  asetat  dan  n-heksan menunjukkan  bahwa  polaritas  pelarut  dapat berpengaruhi  terhadap  kandungan  senyawa metabolit  sekunder  pada  terekstrak  tersebut. Hal  tersebut  dijelaskan  bahwa  jenis  pelarut dapat  berpengaruh  terhadap  kandungan senyawa  aktif  pada  terekstrak  berdasarkan prinsip like  dissolve  like ,  dimana  senyawa yang  bersifat  polar  akan  larut  dalam  pelarut polar  dan  senyawa  yang  bersifat  nonpolar akan larut dalam pelarut nonpolar [9]. Hal ini dapat  dijelaskan  oleh  bahwa  efektivitas ekstraksi  suatu  senyawa  tergantung  kepada kelarutan senyawa tersebut, sesuai prinsip like dissolve like [32].

## 3.3. Kadar  Senyawa  Metabolit  Sekunder pada  Ekstrak  Tumbuhan  Lino  (G.

## koordersiana Burret)
Hasil  penetapan  kadar  senyawa  metabolit sekunder pada ekstrak  tumbuhan  Lino  ( G. koordersiana  Burret )  menggunakan  pelarut etanol,  metanol,  etil  asetat  dan  n-heksan seperti pada Tabel 3.
Kadar  flavanoid  pada  ekstrak  ET  dan  EM adalah  91,58  mg QE /g  dan  88,25  mg QE /g . Hal  ini  dijelaskan  bahwa  perbedaan  jenis pelarut  berpengaruh  terhadap  kelarutan senyawa  flavonoid  [11].  Jenis  pelarut berpengaruh  terhadap  kadar  flavonoid  yang

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
diperoleh.  Hal  ini  disebabkan  kelarutan senyawa  flavonoid  tergantung  dari  polaritas pelarut dan polaritas senyawa [33].
Kadar senyawa fenolat pada ekstrak ET, EM dan EA adalah 216,68 mg GAE /g, 207,99 mg GAE /g  dan  89,19  mg GAE /g.  Hal  ini
menunjukkan  bahwa  perbedaan  Jenis  pelarut berpengaruh terhadap kadar fenolat. Perbedaan jenis pelarut dalam proses ekstraksi berpengaruh  terhadap  kadar  fenolat  dan flavonoid [34].
Tabel 3 . Kadar kadar senyawa metabolit sekunder pada ekstrak tumbuhan Lino ( G. koordersiana Burret )
Ekstrak   Alkaloid total mg / g Flavanoid total (mg QE/g) Fenolat total (mg GAE/g) Triterpenoi d total (mg /g) Saponin (mg SE/g) Tanin  total (mg TAE/g) ET 34,65 91,58 216,68 64,89 242,22 49,06 EM 77,55 88,25 207,99 85,33 131,11 39,40 EA - - 89,19 200,89 - 20,09 EH - - - 168,22 - -
Kadar  alkaloid  pada  ekstrak  ET  dan  EM adalah  34,65  mg/g  dan  77,55  mg/g.  Kadar senyawa  alkaloid  pada  ekstrak  EM  lebih tinggi daripada ekstrak ET. Hal ini dijelaskan bahwa senyawa alkaloid memiliki gugus polar sehingga  larut  dalam  pelarut  polar  [35].  Hal tersebut  dijelaskan  bahwa  pelarut  dapat berpengaruh terhadap kelarutan senyawa aktif dan selektivitas ekstraksi [22].
Kadar saponin total pada ekstrak ET dan EM  adalah  242,22  mg SE /g  dan  131,11  mg SE /g.  Hal  tersebut  dijelaskan  bahwa  ekstrak kulit  batang G.    koordersiana  Burret mengadung  senyawa  saponin  yang  larut dalam  pelarut  etanol  dan  metanol.  Hal  ini
dijelaskan bahwa jenis pelarut dapat berpengaruh terhadap kadar saponin [36].
Kadar terpenoid untuk ekstrak ET, EM, EA dan EH berturut-turut adalah 64,89 mg/g; 85,33  mg/g;  200,89  mg/g  dan  168,22  mg/g. Hal  ini  dapat  dijelaskan  ekstrak  kulit  batang G. koordersiana Burret mengandung terpenoid.
Kadar  tanin  pada  ekstrak  ET  adalah 49,06  mg TAE /g  dan  EM  adalah  39,40  mg TAE /g  serta  EA  adalah  20,92  mg TAE /g. Kadar tanin ekstrak EM memiliki kadar lebih tinggi dibandingkan ekstrak ET dan EA. Hal ini  dapat  dijelaskan  bahwa  semakin  polar pelarut yang digunakan semakin tinggi kadar

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
tanin  yang  diperoleh.  Hal  tersebut  dapat dijelaskan  bahwa  senyawa  tanin  merupakan senyawa polar yang larut dalam pelarut polar, sesuai  prinsip like  dissolve  like .  Hal  ini menunjukkan bahwa jenis pelarut
berpengaruh pada proses ekstraksi tanin [37].
3.4. Aktivitas Antiosidan
Ekstrak Tumbuhan  Lino  (G.  koordersiana

## Burret)
Hasil  uji  aktivitas  antioksidan  ekstrak  kulit batang Lino ( G. koordersiana Burret ) dengan pelarut  etanol,  metanol,  etil  asetat  dan  n- heksan seperti pada Tabel 4 .
Tabel 4. Hasil uji aktivitas antioksidan ekstrak kulit batang Lino ( G. koordersiana Burret )
Ekstrak Konsentras i (ppm) (%) Inhibisi Persamaan garis Nilai IC 50 ET 2,5 15,28 y = 4,13x + 6,45 R² = 0,9979 10,55 ppm 5 27,63 10 49,49 20 88,16 EM 2,5 14,92 y = 4,23x + 3,51 R² = 0,9978 10,99 ppm 5 22,66 10 47,28 20 87,69 EA 12,5 23,18 y  =  0,73x  + 17,30 R² = 0,9911 44,79 ppm 25 38,36 50 55,08 100 89,13 EH 500 28,83 y  =  0,017x  + 22,339 R² = 0,9959 1627,12 ppm 1000 40,80 2000 57,67 4000 89,57 Vitamin C 1,25 5,92 y  =  27,313x  - 21,94 R² = 0,9989 2,63 ppm 2,5 31,23 5 61,27 10 86,95

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
Berdasarkan Tabel  4 menunjukkan  bahwa ekstrak ET, EM, ET dan EH dengan nilai IC 50 berturut-turut  adalah  10,55  ppm,  10,99  ppm, 44,79  ppm  dan  1627,12  ppm.  Sedangkan vitamin  C  sebagai  kontrol  dengan  nilai  IC 50 adalah  2,62  ppm.  Hasil  uji  aktivitas antioksidan ekstrak ET, EM dan EA memiliki aktivitas  antioksidan  dengan  kategori  sangat kuat.  Sedangkan  ekstrak  EH  memiliki aktivitas  antioksidan  dengan  kategori  tidak aktif.  Hal  ini  dijelaskan  bahwa  aktivitas antioksidan  dapat  dikategorikan  sangat  kuat dengan  nilai  IC 50 kurang  50  ppm,  kategori kuat  dengan  nilai  IC 50 pada  kisaran  50-100 ppm,  kategori  sedang  dengan  nilai  IC 50 pada kisaran 100-250 ppm, kategori lemah dengan nilai  IC 50 pada  kisaran  250-500  ppm  dan kategori tidak aktif dengan nilai IC 50 lebih dari 500 ppm [38]. Berdasarkan hasil uji aktivitas antioksidan  ekstrak  kulit  batang  Lino  ( G. koordersiana  Burret )  bahwa  jenis  pelarut berpengaruh  terhadap  aktivitas  antioksidan. Hal  ini  dijelaskan  bahwa  jenis  pelarut berpengaruh  terhadap  aktivitas  antioksidan [39]  dan  [40].  Hal  tersebut  dijelaskan  bahwa hasil  uji  fitokimia  ekstrak  ET  dan  EM mengandung  senyawa  metabolit  sekunder alkaloid,  flavanoid,  fenolat,  triterpenoid, saponin  dan  tanin.  Sedangkan  ekstrak  EA mengandung  senyawa  metabolit  sekunder fenolat  dan  triterpenoid  serta  ekstrak  EH mengandung  senyawa  metabolit  sekunder
triterpenoid.  Hal  ini  dijelaskan  bahwa senyawa  metabolit  sekunder  berpotensi sebagai antioksidan yang mampu menetralisir radikal  bebas  [41].  Antioksidan  memiliki perang  penting  dalam  menjaga  kesehatan karena  mampu  dapat  menangkap  molekul radikal  bebas  [42].  Radikal  bebas  dapat dicegah  dengan  senyawa  antioksidan  [43]. Antioksidan  dari  bahan  alam  berupa  fenolat, flavonoid,  tanin  dan  vitamin  E  dan antioksidan sintetik seperti butylated hidroxyanisole (BHA) dan butylated hydroxytoluena (BHT) [44].

## IV. KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  penelitian  dapat disimpulkan  bahwa hasil  uji  fitokimia menunjukkan  ekstrak  ET  dan  EM  positif mengandung  alkaloid,  flavanoid,  fenolat, triterpenoid,  saponin  dan  tanin.  Sedangkan ekstrak  EA  positif  mengandung  fenolat, triterpenoid dan tanin serta ekstrak EH positif mengandung triterpenoid. Ekstrak ET mengandung  alkaloid,  flavanoid,  fenolat, triterpenoid,  saponin  dan  tanin  dengan  kadar berturut-turut  adalah  34,65  mg/g,  91,58  mg QE/g, 216,68 mg GAE /g, 64,89 mg/g, 242,22 mg SE /g  dan  49,06  mg TAE /g.  Ekstrak  EM megandung  alkaloid,  flavanoid,  fenolat, triterpenoid,  saponin  dan  tanin  dengan  kadar berturut-turut  adalah  77,55  mg/g,  88,25  mg QE /g, 207,99 mg GAE /g, 85,33 mg/g, 131,11

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
mg SE /g,  39,40  mg TAE /g.  Ekstrak  EA mengandung  fenolat,    triterpenoid  dan  tanin dengan  kadar  berturut-turut adalah  89,19  mg GAE /g,   200,89 mg/g, dan 20,09 mg TAE /g. Ekstrak EH mengandung triterpenoid dengan kadar adalah 168,22 mg/g.
Hasil  uji  aktivitas  antioksidan  ekstrak ET,  EM  dan  EA  memiliki  aktivitas antioksidan  dengan  kategori  sangat  kuat. Sedangkan  ekstrak  EH  memiliki  aktivitas antioksidan dengan kategori tidak aktif..

## DAFTAR PUSTAKA
[1] T.  W.  Handayani,  Y.  Yusuf,  and  J. Tandi, “Analisis Kualitatif dan
Kuantitatif Metabolit Sekunder Ekstrak Biji  Kelor  (Moringa  oleifera  Lam.) dengan  Metode  Spektrofotometri  UV-
Vis,” KOVALEN J. Ris. Kim. , vol. 6, no.
3, pp. 230–238, 2020, doi:
10.22487/kovalen.2020.v6.i3.15324
[2] H.  M.  Sangat,  E.  A.  M.  Zuhud,  and E. K.  Damayanti, Kamus  Penyakit  dan
Tumbuhan Obat Indonesia (Etnofitomedika)  1 .  Jakarta:  Yayasan Obor Indonesia, 2000. [Online].
Available:
https://lib.ui.ac.id/detail.jsp?id=101499
[3] M.  M.  Taek,  B.  P.  Ew,  and  M.  Agil,
“Plants used in traditional medicine for treatment  of  malaria  by  Tetun  ethnic people in West Timor Indonesia,” Asian
Pac. J. Trop. Med. , vol. 11, no. 11, pp.
630–637,  2018,  doi:  10.4103/1995- 7645.246339.
[4] D.  R.  Badaring,  S.  P.  M.  Sari,  S. Nurhabiba,  W.  Wulan,  and  S.  A.  R.
Lembang,  “Uji  Ekstrak  Daun  Maja (Aegle marmelos L.) terhadap Pertumbuhan  Bakteri  Escherichia  coli dan Staphylococcus aureus,” Indones. J.
Fundam.  Sci. ,  vol.  6,  no.  1,  pp.  16–26, 2020, doi: 10.26858/ijfs.v6i1.13941.
[5] N.  Pawarti,  M.  Iqbal,  D.  A.  Ramdini, and  C.  Yuliyanda,  “Pengaruh  Metode Ekstraksi  Terhadap  Persen  Rendemen dan  Kadar  Fenolat  Ekstrak  Tanaman yang  Berpotensi  sebagai  Antioksidan,”
Medula ,  vol.  13,  no.  4,  pp.  590–593, 2023.
[6] Febrina  et  al,  “Optimalisasi  ekstraksi dan  uji  metabolit  sekunder  tumbuhan libo (Ficus variagate Blume),” J. Trop. Pharm. Chem , vol. 3, no. 2, pp. 74–81, 2015.
[7] A.  E.  Kusuma  and  D.  A.  Aprileili, “Pengaruh  JumLah  Pelarut  Terhadap
Rendemen Ekstrak Daun Katuk
(Sauropus  androgynus  L.  Merr),”
SITAWA    J.  Farm.  Sains  dan  Obat Tradis. , vol. 1, no. 2, pp. 125–135, 2022, doi: 10.62018/sitawa.v1i2.22.
[8] N.  K.  L.  Ketut,  K.  Nastiti,  and  Noval, “Pengaruh  Perbedaan  Jenis  Pelarut

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
Terhadap Kadar Flavonoid Total
Ekstrak Daun Sirsak ( Annona muricata L  .)  The  Effect  of  Different  Types  of Solvents  on  Total  Levels  of  Flavonoid Extract  (  Annona  muricata  L  .)
Abstrak,” Junal surya Med. , vol. 9, no.
1, pp. 34–44, 2023.
[9] I. G. Wiranata and M. M. V. Sasadara,
“Pengaruh Pelarut dan Metode Ekstraksi terhadap Kandungan
Metabolit  Sekunder  dan  Nilai  IC50
Ekstrak  Umbi  Bit  (Beta  vulgaris  L.),”
Usadha ,  vol.  2,  no.  1,  pp.  7–13,  2022, doi: 10.36733/usadha.v2i1.5277.
[10]  P.  Anggraeni  Putri,  M.  Chatri,  and  L. Advinda, “Karakteristik Saponin
Senyawa  Metabolit  Sekunder  pada
Tumbuhan,” Serambi Biol. , vol. 8, no. 2, pp. 251–258, 2023.
[11]  J. Y. Putri, K. Nastiti, and N. Hidayah, “Pengaruh  Pelarut  Etanol  70%  Dan Metanol  Terhadap  Kadar  Flavonoid Total  Ekstrak  Daun  Sirsak  (Annona muricata  Linn),” J.  Pharm.  Care  Sci. , vol.  3,  no.  2,  pp.  20–29,  2023,  doi: 10.33859/jpcs.v3i2.235.
[12]  Y. Mulyani, E. Bachtiar, and M. U. K. A,  “Peranan  Senyawa  Metabolit Sekunder Tumbuhan Mangrove
Terhadap  Infeksi  Bakteri  Aeromonas hydrophila  Pada  Ikan  Mas  (Cyprinus
carpio L.),” J. Akuatika , vol. IV, no. 1, pp. 1–9, 2013.
[13]  D.  Purwanto,  S.  Bahri,  and  A.  Ridhay,
“Uji  Aktivitas  Antioksidan  Ekstrak
Buah Purnajiwa (Kopsia arborea Blume.) DENGAN BERBAGAI PELARUT,” Kovalen ,  vol.  3,  no.  1,  p. 24, 2017, doi:
10.22487/j24775398.2017.v3.i1.8230.
[14]  R.  Devitria,  H.  Sepriyani,  and  S.  Sari, “Uji  Aktivitas  Antioksidan  Ekstrak Metanol  Daun  Ciplukan  menggunakan Metode  2,2-Diphenyl  1-Picrylhydrazyl (DPPH),” J.  Penelit.  Farm.  Indones. , vol.  9,  no.  1,  pp.  31–36,  2020,  doi: 10.51887/jpfi.v9i1.800.
[15]  E. Kurnianto and I. R. Rahman, “Potensi Tabir Surya Ekstrak Etanol Daun Matoa (Pometia  Pinnata)  Dengan  Variasi Konsentrasi  Pelarut,” J.  Ilm.  Ibnu  Sina
Ilmu Farm. dan Kesehat. , vol. 6, no. 2, pp. 102–108, 2021, doi:
10.36387/jiis.v7i1.835.
[16]  Mukhriani, R. Sugiarna, N. Farhan, M. Rusdi,  and    muh  I.  Arsul,  “Kadar Fenolat  dan  Flavonoid  Total  Ekstrak Etanol Daun Anggur (Vitis vinifera L),” ad-Dawaa’ J. Pharm. Sci. , vol. 2, no. 2, pp. 95–102, 2019, doi:
10.24252/djps.v2i2.11503.
[17]  S.  Wahyuni  and  M.  P.  Marpaung, “PENENTUAN  KADAR  ALKALOID

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
TOTAL  EKSTRAK  AKAR  KUNING (Fibraurea chloroleuca Miers) BERDASARKAN PERBEDAAN

## KONSENTRASI  ETANOL  DENGAN
METODE SPEKTROFOTOMETRI
UV-VIS,” Dalt.  J. Pendidik. Kim. dan Ilmu  Kim. ,  vol.  3,  no.  2,  pp.  52–61, 2020, doi: 10.31602/dl.v3i2.3911.
[18]  L.  Malangngi,  M.  Sangi,  and  J. Paendong,  “Penentuan  Kandungan Tanin  dan  Uji  Aktivitas  Antioksidan Ekstrak  Biji  Buah  Alpukat  (Persea americana Mill.),” J. MIPA , vol. 1, no.
1, pp. 5–10, 2012, doi: 10.35799/jm.1.1.2012.423. [19]  S.  K.  Malik,  M.  Ahmad,  and  F.  Khan,
“Qualtitative and
Quantitative
Estimation  of  Terpenoid  Contents  in Some  Important  Plants  of  Punjab,
Pakistan,” Pak. J. Sci. , vol. 69, no. 2, pp.
150–154, 2023, doi:
10.57041/pjs.v69i2.364.
[20]  M.  I.  Rizki,  A.  K.  Sari,  D.  Kartika,  A. Khairunnisa, and Normaidah, “Penetapan Kadar Fenolat Total dan Uji Aktivitas  Antioksidan  Fraksi  dari
Ekstrak Etanol Daun Cempedak (Artocarpus  integer)  dengan  Metode DPPH,” MPI  (Media  Pharm.  Indones. , vol.  4,  no.  2,  pp.  168–178,  2022,  doi:
10.24123/mpi.v4i2.4937.
[21]  G.  S.  Agustien  and  Susanti,  “Pengaruh Jenis  Pelarut  Terhadap  Hasil  Ekstraksi
Daun Lidah Mertua (Sansevieria trifasciata),” Pros.  Semin.  Nas.  Farm. UAD , pp. 39–45, 2021.
[22]  A.  Luviana et  al. ,  “Pengaruh  Pelarut yang Digunakan terhadap Hasil Ekstraksi Kunyit (Curcuma Longa L.),” in Industrial  Research  Workshop  and National Seminar , 2023, pp. 123–127.
[23]  A. Kurniawati, “Pengaruh Jenis Pelarut Pada  Proses  Ekstraksi  Bunga  Mawar Dengan  Metode  Maserasi  Sebagai Aroma Parfum,” J. Creat. Student , vol. 2,  no.  2,  pp.  74–83,  2019,  doi: 10.15294/jcs.v2i2.14587.
[24]  M. Carica Dewi, N. Mira Kusumaningtyas, and Kurniawan,
“SStudi  Pengaruh  Variasi  konsentrasi Pelarut Maserasi Terhadap kadar Senyawa Flavanoid Teh Hijau (Camelia Sinensis),” J. Islam. Pharm. , vol. 5, no. 1, pp. 67–72, 2021.
[25]  B. Satriawan and A. Wijaya, “PENGARUH  PERBEDAAN  JENIS PELARUT TERHADAP NILAI RENDEMEN EKSTRAK DAUN
PEPAYA ( Carica Papaya . L ),” vol. 5, no. 01, pp. 10–17, 2023.
[26]  M. Verdiana, I. W. R. Widarta, and I. D. G.  M.  Permana,  “PENGARUH  JENIS PELARUT PADA EKSTRAKSI

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
MENGGUNAKAN GELOMBANG ULTRASONIK TERHADAP AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK  KULIT  BUAH  LEMON
(Citrus limon (Linn.) Burm F.),” J. Ilmu
dan  Teknol.  Pangan ,  vol.  7,  no.  4,  pp.
213–222, 2018, doi:
10.24843/itepa.2018.v07.i04.p08. [27]  J.  Pangisian,  M.  S.  Sangi,  and  M.
Kumaunang, “Analisis Senyawa Metabolit  Sekunder  dan  Uji  Aktivitas Antioksidan serta Antibakteri Biji Buah Pangi  (Pangium  edule  Reinw),” J. LPPM Bid. Sains dan Teknol. , vol. 7, no.
1, pp. 11–19, 2022.
[28]  A.  Khafid et  al. ,  “UJi  Kualitatif Metabolit  Sekunder  pada  Beberapa Tanaman yang Berkhasiat sebagai Obat Tradisional,” Bul. Anat. dan Fisiol. , vol.
8,  no.  1,  pp.  61–70,  2023,  doi:
10.14710/baf.8.1.2023.61-70.
[29]  D.  W.  Kusumo,  E.  Kusuma  Ningrum, and C. Hayu Adi Makayasa, “SKRINING FITOKIMIA SENYAWA METABOLIT  SEKUNDER  PADA EKSTRAK ETANOL BUNGA PEPAYA (Carica papaya L.) (Phytochemical Screening of Secondary
Metabolites in Papaya Flowers / Carica papaya L.),” J. Curr. Pharm. Sci. , vol. 5,
no. 2, pp. 478–483, 2022.
[30]  B.  I.  Rumagit,  E.  Nahor,  and  C.  C. Lalura, “Identifikasi senyawa metabolit sekunder pada ekstrak etanol kulit buah mangga  kweni  (Mangifera  odorata Griff.),” Pros. Semin. Nas. , vol. 1, no. 6, pp. 14–19, 2020.
[31]  M.  Walid  and  D.  N.  Putri,  “Skrining Senyawa Metabolit Sekunder Dan Total Fenol Kopi Robusta (Coffea canephora Pierre  Ex  a.  Froehner)  Di  Daerah Petungkriyono  Pekalongan,” Pena  J. Ilmu Pengetah. dan Teknol. , vol. 37, no. 1, pp. 1–10, 2023, doi: 10.31941/jurnalpena.v37i1.2928.
[32]  Hartati, B. Syamsuddin, and H. Karim, “Pengaruh  Jenis  Pelarut  terhadap
Kandungan Senyawa Metabolit
Sekunder  Klika  Kayu  Jawa  (  Lannea coromendelica  ),” J.  Sainsmat ,  vol.  8, no. 2, pp. 19–27, 2019.
[33]  A.  Mubarokah,  Kurniawan,  and  N.  M. Kusumaningtyas,  “Penetapan  Kadar Senyawa  Flavonoid  Ekstrak  Etanol 96%,  Metanol  96%,  Etil  Asetat  96% Rimpang  Lengkuas  Merah  (Alpinia purpurata K.Schum) Dengan
Spektrofotometri Uv-Vis,” J. Ilm. Glob.
Farm. , vol. 1, no. 1, pp. 1–8, 2023.
[34]  L.  Wismayani,  A.  Roni,  and  Tri Minarsih,  “Penentuan  Kadar  Fenolat dan  Flavonoid  Total  Ekstrak  Daun Renggak  (Amomum  dealbatum  Roxb.)

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
dari Berbagai Pelarut Secara
Spektrofotometri  Uv-Vis,” Indones.  J. Pharm.  Nat.  Prod. ,  vol.  5,  no.  2,  pp.
142–151, 2022, doi:
https://dx.doi.org/10.24843/jrma.2019. v07.i04.p06.
[35]  Y.  P.  Utami,  E.  Arruansaratu,  and  F. Jumaetri,  “Analisis  Kadar  Total
Alkaloid  Dari  Beberapa  Ekstrak  Daun Patikala  (Etlingera  Elatior  (Jack)  R.M. Smith),” Pros. Semin. Nas.
Kefarmasian , pp. 1–6, 2022.
[36]  I. M. Lumbanraja, N. M. Wartini, and L. Suhendra,  “Pengaruh  Jenis  Pelarut  dan Ukuran Partikel Bahan terhadap Karakteristik  Ekstrak  Daun  Bidara (Ziziphus mauritiana L.) sebagai Sumber  Saponin,” J.  Rekayasa  Dan Manaj.  Agroindustri ,  vol.  7,  no.  4,  pp. 541–550, 2019, doi:
10.24843/jrma.2019.v07.i04.p06.
[37]  H. Niawanti and N. P. Putri, “Pemilihan Jenis Pelarut Pada Ekstraksi Tanin Dari Daun Averrhoa Bilimbi Dengan Metode Soxhletasi,” J. Integr. Proses , vol. 9, no. 2, pp. 15–20, 2020, doi: 10.36055/jip.v9i2.9391. [38]  Aisyah Meisya Putri, “PERBANDINGAN AKTIFITAS ANTIOKSIDAN  TERHADAP  BIJI BUNGA MATAHARI (Halianthus Annuus  L.)  DENGAN  TUMBUHAN
LAINNYA,” J. Res. Educ. Chem. , vol.
2,  no.  2,  pp.  85–91,  2020,  doi: 10.25299/jrec.2020.vol2(2).5667.
[39]  S.  Ine,  F.  Yuniarti,  A.  Yulia,  R. Rindiyani,  and  N.  Nisa,  “Pengaruh
Pelarut Polar Terhadap Aktivitas Antioksidan Daging Buah Naga Merah (Hylocereus Polyrhizus) Yang Diekstraksi Dengan Metode Microwave Assisted Extraction (Mae),” Pharmacoscript , vol. 5, no. 2, pp. 237– 247, 2022, doi:
10.36423/pharmacoscript.v5i2.1007.
[40]  N. P. yunika C. Riskiana and R. L. Vifta, “Kajian  Pengaruh  Pelarut  Terhadap aktivitas Antioksidan Alga coklat Genus Sargassum  dengan  Metode  DPPH,” J. Holistics  Heal.  Sci. ,  vol.  3,  no.  2,  pp.
201–213,  2021,  [Online].  Available: http://e-
abdimas.unw.ac.id/index.php/jhhs/artic le/download/80/69/
[41]  R.  A.  Nugrahani  and  N.  Ayuwardani,
“UJI  ANTIOKSIDAN  EKSTRAK
ETANOL AKAR DAN KULIT
BATANG  KELOR  (Moringa  oleifera Lam.)  DENGAN  METODE  DPPH (2,2-difenil-1-pikrilhidrazil),” J. Iilmiah
Farm. , vol. 12, no. 1, pp. 10–17, 2023.
[42]  Adrianta Agus  Ketut,  “Aktivitas
Antioksidan Daun Magenta (Peristrophe bivalvis (L.) Merr) Sebagai

## Pote, dkk., Akta Kimia Indonesia 9(1), 2024, 71-90
Salah Satu Kandidat Pengobatan Bahan Berbasis  Herbal  Serta  Bioaktivitasnya Sebagai  Analgetik,” J.  Ilm.  Medicam. , vol. 6, no. 1, pp. 33–39, 2020.
[43]  Hafiz  Ramadhan,  D.  Baidah,  N.  P. Lestari,  and  K.  A.  Yuliana,  “Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol 96% Daun, Buah  dan  Kulit  Terap  (Artocarpus odorratissimus)  Menggunakan  Metode Cuprac,” Farmasains    J.  Ilm.  Ilmu
Kefarmasian ,  vol.  7,  no.  1,  pp.  7–12,
2020, doi: 10.22236/farmasains.v7i1.4331.
[44]  D.  G.  Katja,  “FITOKIMIA  DAN
AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK KULIT BATANG Chisocheton sp. (C.DC) Harms
(Meliaceae),” Chem. Prog. , vol. 13, no.
2, pp. 117–122, 2020, doi: 10.35799/cp.13.2.2020.31672.