## PRODUKSI DAN APLIKASI PEPTON IKAN SELAR UNTUK MEDIA PERTUMBUHAN BAKTERI

## Application and Production of Yellowstripe Sead Fish Peptone for Bacteria’s Growth Media
Dede Saputra 1* , Tati Nurhayati 2
1 Jurusan Teknik Industri, Fakultas Teknik, Universitas Bina Nusantara Jln. K.H. Syahdan No. 9, Jakarta Barat 11480
2 Departemen Teknologi Hasil Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor Jln. Agatis, Gedung FPIK, IPB Dramaga, Bogor 16680
*Korespondensi: e-mail: ddsaputra@binus.ac.id; ddsaputra87@gmail.com
Diterima 19 Oktober 2013/Disetujui 3 Januari 2014

## Abstract
Peptone is defi ned as a protein hydrolysate soluble in water and non-coagulable under heat. Fish hydrolysate-based peptone were produced through enzymatic hydrolysis from yellowstrapes sead muscle and it’s quality for bacterial growth were also evaluated. Th e hydrolysis processes were carried out on post rigor muscle with 0.26% (w/v) papain for 6 hours. Fish peptone had high protein level (74.17% wet basis) and contained essential amino acids such as histidine, isoleucine, leucine, lysine, methionine, phenylalanine, threonine, valine, and arginine. Th e solubility of fi sh peptone was 96.74%, with total nitrogen 11.86%; α-amino nitrogen 1.07 g/100 g; α-amino nitrogen per total nitrogen 9.02; and 0.41% saline. Optical density of bacteria growth on fi sh peptone higher than commercial peptone indicating that the fi sh peptone has higher capacity to support the growth of bacteria in simple media.
Keywords: amino acids, enzyme, hydrolisis, peptone, post rigor,

## Abstrak
Pepton adalah hidrolisat protein yang larut dalam air dan tidak menggumpal jika dipanaskan. Tujuan dari studi ini adalah untuk: 1) mengevaluasi potensi ikan selar sebagai bahan baku pepton ikan, 2) mengoptimasi penggunaan enzim terpilih, 3) mengarakterisasi pepton ikan selar, 4) membandingkan mutu pepton ikan selar dengan pepton komersial sebagai media pertumbuhan bakteri. Proses hidrolisis ikan selar fase post rigor dengan penambahan enzim papain 0,26% (b/v) selama 6 jam. Analisis proksimat pepton ikan selar, menunjukkan kadar protein yang tinggi (74,17% basis basah) dan mengandung beberapa jenis asam amino essensial, yaitu histidina, isoleusina, leusina, lisina, metionina, fenilalanina, treonina, valina, tirosina, dan arginina. Uji karakteristik pepton ikan menunjukkan bahwa kelarutan pepton ikan post rigor yaitu 96,74%, dengan total nitrogen 11,86%, α-amino nitrogen 1,07 g/100 g, α-amino nitrogen per total nitrogen 9,02; dan kadar garam 0,41%. Nilai optical density bakteri ditumbuhkan pada media yang menggunakan pepton ikan lebih tinggi dibandingkan pertumbuhan bakteri pada media yang menggunakan pepton komersial.
Kata kunci: asam amino, enzim, hidrolisis, pepton, post rigor

## PENDAHULUAN
Keragaman hayati laut Indonesia memberikan pengaruh yang sangat signifi kan bagi kemajuan masyarakat. Salah satu sumberdaya hayati yang melimpah adalah hasil tangkapan sampingan (HTS) yang berpotensi sebagai bahan baku untuk menghasilkan
produk yang memiliki nilai jual tinggi, baik di pasaran regional maupun internasional.
Salah satu jenis ikan HTS yang umum dikenal masyarakat Indonesia adalah ikan selar. Ikan selar merupakan ikan pelagis yang memiliki kandungan protein tinggi, yaitu 64,27% (bk) (Hidayat 2005). Pemanfaatan
ikan-ikan HTS selama ini banyak tertuju pada pembuatan produk, misalnya minyak ikan, silase, tepung ikan, protein konsentrat, dan lainnya. Perkembangan teknologi yang semakain pesat, memungkinkan peningkatan nilai jual ikan HTS dengan membuatnya menjadi produk misalnya pepton ikan.
Menurut Clausen et al. (1985), pepton dapat diperoleh dari hasil hidrolisis protein hewani yang berasal dari baik limbah (jeroan), daging yang tidak bernilai ekonomis tinggi, gelatin, susu, kasein, tanaman maupun khamir. Green et al. (1977) menyatakan bahwa pepton adalah hidrolisat protein yang larut dalam air dan tidak menggumpal jika dipanaskan. Penggunaan ikan sebagai bahan dasar penghasil pepton telah dilaporkan oleh Green et al. (1977), Gildberg et al. (1989), dan Dufossé et al. (2001) melaporkan bahwa pepton ikan adalah sebagai komponen untuk substrat pertumbuhan mikroba. Sumber lain disampaikan oleh Strasdine dan Melville (1972); Beuchat (1974); Jassim et al. (1988); Strom dan Raa (1993) yang melaporkan bahwa limbah ikan juga telah diteliti sebagai bahan dasar penghasil pepton.  Pepton ini juga merupakan sumber nitrogen utama dalam media komersial untuk pertumbuhan mikroba yang terdiri dari campuran polipeptida, dipeptida, dan asam amino yang dapat diperoleh dari bahan yang mengandung protein melalui  reaksi hidrolisis asam atau enzimatis (Fachraniah et al. 2002).
Pepton dapat dihasilkan melalui proses hidrolisis menggunakan asam, basa, enzim yang berasal bahan baku, atau menambahakan enzim proteolitik dari luar. Kristinssson dan Rasco (2000) melaporkan bahwa hirolisat protein dapat dilakukan menggunakan enzim, basa, enzim yang berasal dari ikan, dan penambahan enzim protease yang berasal dari mikroba atau enzim protease pencernaan. Th iansilakul et al. (2007) melakukan hidrolisis ikan Decapterus maruadsi menggunakan fl avourenzyme (enzim endo dan eksopeptidase). Karaketistik pepton komersial meliputi parameter kelarutan dalam air mencapai
100%, total nitrogen (TN) 12-13%, α-amino nitrogen (AN) (1,2-2,5)%, AN/TN≤17 dengan kadar garam (NaCl) (11-21)% (Bionutrient Technical Manual 2006). Tonkova et al. (2007) melaporkan bahwa karakteristik pepton tidak mengalami presipitasi oleh panas, alkali, dan amonium sulfat jenuh.
Kebutuhan  pepton di Indonesia selama ini dipenuhi melalui impor dengan harga yang tinggi dan terus meningkat setiap tahunnya. Data BPS menunjukkan bahwa impor pepton dari bulan Januari hingga April tahun 2005 di Indonesia mengalami peningkatan menjadi 1.306.618 kg dengan harga sebesar US $ 3,5 juta (BPS 2005) sehingga perlu dilakukan penelitian mengenai pembuatan pepton dari bahan baku yang tidak layak konsumsi yaitu ikan-ikan HTS. Tujuan penelitian ini adalah mengevaluasi potensi ikan selar sebagai bahan baku pepton ikan, optimasi penggunaan enzim terpilih, karakterisasi pepton ikan, dan perbandingan mutu pepton ikan selar dengan pepton komersial sebagai media pertumbuhan bakteri.

## BAHAN DAN METODE

## Bahan dan Alat
Bahan utama yang digunakan terdiri dari ikan selar ( Caranx leptolepis ) hasil tangkap sampingan dan enzim papain. Bahan untuk uji proksimat dan asam amino ikan selar dan tepung pepton, antara lain H 2 SO 4 , HCl, KOH, NaOH, Na 2 S 2 O 3 , H 3 BO 3 produk Merck
, asetonitril 60%, dan asam amino standar.
Bahan untuk uji pertumbuhan bakteri adalah bakteri Salmonella sp. (diperoleh dari Lab Mikrobiologi SEAFAST IPB), Pseudomonas aeruginosa (Koleksi Lab Mikrobiologi FKH, IPB), nutrient broth (NB) (DIFCO 234000), pepton komersial ( bactopeptone ) (DIFCO
234000), dan bahan analisis mikrobiologi lainnya. Alat-alat yang digunakan, antara lain
Hotshaker bath (B-Bräunc), spektrofotometer (Spectronic-20), High Performance Liquid Chromatogaphy (HPLC) merek Waters , oven (Yamato) dan seperangkat peralatan gelas (PYREX), (DURAN), dan plastik serta peralatan analisis kimia dan biokimia standar lainnya.
Produksi dan aplikasi pepton ikan, Saputra D, Nurhayati T

## Metode Penelitian
Analisis Komposisi Kimia Ikan Selar Penelitian tahap ini bertujuan menentukan komposisi kimia ikan selar melalui analisis proksimat. Analisis proksimat termasuk didalamnya uji kadar air, lemak, abu, dan protein.

## Penentuan Konsentrasi Terpilih Enzim
Penelitian tahap ini bertujuan menetapkan konsentrasi terpilih enzim yang akan digunakan dalam penelitian tahap selanjutnya. Penelitian tahap ini menggunakan konsentrasi enzim papain 0% (kontrol), 0,02%; 0,08%; 0,14%;  0,20%; 0,26%; dan 0,32% (b/v).  Hidrolisis dilakukan pada suhu 60oC selama 6 jam menggunakan ikan selar ( Caranx leptolepis ) fase post rigor . Konsentrasi yang terpilih ditentukan dengan mengukur perbandingan antara total nitrogen terlarut dan total nitrogen bahan (NTT/NTB) (AOAC 2005). Tahap ini bertujuan menentukan pengaruh konsentrasi enzim papain terhadap rata-rata nilai NTT/NTB dan waktu hidrolisis terhadap nilai pH.  Perubahan nilai pH selama hidrolisis diukur dengan pH meter pada 3 titik yakni 2, 4, dan 6 jam hidrolis.

## Karakterisasi Pepton Ikan Selar dan Pepton Komersial
Penelitian tahap ini bertujuan membandingkan pepton ikan selar ( Caranx leptolepis ) hasil dari hidrolisis pada kondisi yang tepat (konsentrasi terpilih enzim dan waktu hidrolisis terpilih) dengan pepton komersial.  Analisis yang dilakukan, yaitu uji proksimat pepton ikan selar post rigor (AOAC 2005), kelarutan dalam air,  total nitrogen (AOAC 2005), α-amino nitrogen (AOAC 2005), analisis asam amino (AOAC 2005), AN/TN, dan kadar garam (AOAC 2005).
Perbandingan Mutu Pepton Ikan Selar dengan Pepton Komersial sebagai Media Sederhana Pertumbuhan Bakteri
Penelitian tahap ini bertujuan melihat kemampuan daya dukung pepton ikan
selar post rigor sebagai media sederhana untuk pertumbuhan bakteri dibandingkan dengan pepton komersial. Inokulum dibuat dengan menginokulasikan 1-2 ose biakan bakteri uji yang telah disegarkan ke dalam media pertumbuhan dan diinkubasi selama 18 jam. Tahap berikutnya adalah inokulasikan inokulum sebanyak 10% (v/v) ke dalam media pertumbuhan bakteri. Kultur kemudian diinkubasi pada suhu 37oC dalam water bath selama 24 jam. Penentuan kurva pertumbuhan bakteri Salmonella sp. dan Pseudomonas aeruginosa diukur melalui nilai optical density (OD) pada panjang gelombang 600 nm (Aspmo et al. 2005) selama 24 jam yang dilakukan setiap 2 jam sekali menggunakan spektofotometer (modifi kasi Desniar et al . 2006).

## Metode Produksi Pepton
Ikan selar sebanyak 100 g dicincang sehingga berbentuk kecil-kecil. Tahap selanjutnya dihomogenisasi dengan air perbandingan 1:2 yaitu satu bagian daging ikan selar (basis basah) dicampur dengan dua bagian akuades atau destilata selama (2-5) menit. Campuran yang terbentuk diaduk dan nilai pH campuran diatur hingga mencapai pH 7 pada suhu 60oC untuk menghasilkan aktivitas enzim yang optimal. Hidrolisis dilakukan dengan penambahan enzim papain komersial pada konsentrasi 0% (kontrol), 0,02%, 0,08%, 0,14%, 0,20%, 0,26%, dan 0,32%. Aktivitas enzim dihentikan dengan menaikkan suhu pengadukan menjadi 85oC selama 15 menit. Sampel yang diambil disaring dengan nylon mesh berukuran 150 mesh .  Fase cair diambil, kemudian diendapkan pada suhu 4oC selama 24 jam, bertujuan memisahkan lemak yang terdapat pada cairan, tahap berikutnya dilakukan pengeringan menggunakan spray drier pada suhu ±170oC ( inlet ) dan ±70oC ( outlet ) sehingga diperoleh produk pepton dalam bentuk serbuk.

## Analisis Statistik
Analisis data untuk menentukan waktu hidrolisis dan konsentrasi terpilih enzim
papain dilakukan menggunakan one way ANOVA pola searah dengan tiga kali ulangan dan uji perbandingan berpasangan least signifi cant  diff erent (LSD) dengan soft ware SPSS 16.0, sedangkan untuk komposisi kimia ikan selar dan pepton menggunakan analisis relative standard deviation (RSD) Horwitz.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Komposisi Kimia Ikan Selar ( Caranx leptolepis ) Hasil pengujian komposisi kimia ikan selar menunjukkan nilai kadar air sebesar (14,12±0,58)% (bk), kadar abu (9,51±0,42)% (bk), kadar protein (59,57±0,30)% (bk) dan kadar lemak (12,10±0,00)% (bk). Ikan selar merupakan golongan ikan dengan kadar ptrotein tinggi dan berlemak rendah dan sangat berpotensi digunakan sebagai bahan baku untuk memproduksi pepton asal ikan. Hasil penelitian ini sesuai dengan laporan Hidayat (2005) yang menganalisis kandungan proksimat ikan selar kuning yakni kadar abu 9,51%; kadar protein 64,27% dan kadar lemak 12,10%.

## Penentuan Konsentrasi Terpilih Enzim

## Konsentrasi Terpilih Enzim Papain
Hasil penelitian menunjukkan bahwa semakin tinggi konsentrasi enzim yang ditambahkan, maka semakin tinggi komponen terlarut yang dihasilkan yakni semakin tingginya nilai NTT/NTB. Nilai NTT/NTB dapat dilihat pada Gambar 1.
Konsentrasi enzim 0,26% pada perlakuan post rigor ditetapkan sebagai konsentrasi terpilih dengan nilai NTT/NTB sebesar 0,33. Pemilihan
konsentrasi enzim ini ditetapkan berdasakan uji lanjut least signifi cant  diff erent (LSD) yang menunjukkan bahwa penambahan konsentrasi enzim sebesar 0,26% pada perlakuan post rigor tidak berbeda nyata pada α=0,05 dengan konsentrasi enzim yang lebih tinggi.
Nurhayati (2013) melaporkan bahwa penggunaan 0,26% enzim papain pada hidrolisis jeroan ikan tuna merupakan konsentrasi enzim terpilih yang menghasilkan rasio NTT/NTB tertinggi yang mengindikasikan bahwa proses hidrolisis sempurna.

## Pengaruh Konsentrasi Enzim Papain terhadap Nilai Rata-Rata NTT/NTB dan Waktu Hidrolisis terhadap Nilai pH
Hidrolisis daging ikan sangat dipengaruhi oleh parameter pH. Hidrolisis daging ikan selar dengan menggunakan enzim papain dapat berjalan dengan baik pada kisaran pH netral yaitu berkisar 6-8. Perubahan pH selama proses hidrolisis ikan selar fase post rigor dengan konsentrasi enzim 0,26% selama 6 jam pengamatan ditunjukkan pada Gambar 2.
Gambar 2 menunjukkan bahwa nilai pH dari larutan hidrolisat ikan selar post rigor cenderung berada pada kisaran pH asam mendekati netral yakni 6,22-7,21. Nilai pH yang rendah diduga karena terdenaturasinya protein dalam daging ikan yang menyebabkan terjadinya pemecahan ikatan asam amino. Nilai pH pada hidrolisat menunjukkan konsentrasi ion H - yang dilepaskan selama proses hidrolisis. Hasil yang diperoleh pada penelitian ini sesuai dengan penelitian Yin et al.
(2008), yang menyatakan bahwa kisaran pH selama hidrolisis hemp protein isolate adalah
Gambar 1 Hasil pengukuran nilai NTT/NTB perlakuan post rigor . Superscript yang berbeda menunjukan berbeda nyata pada taraf p <0,05. Gambar 2 Nilai pH hidrolisat ikan selar fase post rigor.
pada pH 4,0-6,0 yang  kemudian mengalami perubahan pada kisaran pH 3,0-7,0. Penelitian  Baskhar dan Mahendrakar (2007) menyebutkan pH dari hidrolisat jeroan catla adalah (6,2±0,15).

## Karakterisasi Pepton Ikan Selar dan
Komersial
Komposisi kimia pepton fase post rigor , yaitu rata-rata nilai kadar air (9,89±0,71)%; abu (5,23±4,22)%; lemak (0,09±0,00)%; protein (81,50±0,19)% (bb) dan total nitrogen (11,86±0,04)%.  Analisis RSD terhadap semua parameter pada  α=0,05 menunjukkan bahwa produk pepton ikan selar  fase post rigor layak dinyatakan sebagai media sederhana pendukung pertumbuhan bakteri, dengan nilai rendemen pepton ikan selar yang dihasilkan sebesar  5,23%.
Hasil analisis kimiawi yang diperoleh pada penelitian ini hampir sama dengan laporan Souissi et al. (2009) yang menunjukkan bahwa hidrolisis protein ikan Sardinella menghasilkan kadar air 1,88%; protein 81,51%; lemak 3,31%, dan kadar abu sebesar 16,98%. Nilai protein yang tinggi yang diperoleh pada pepton ikan dapat dilakukan melalui penghilangan bagian kepala, jeroan, dan tulang menyebabkan peningkatan kadar protein yang dihasilkan karena kandungan lipid dan abu yang terdapat pada kepala dan jeroan telah diminimumkan.
Rendemen pepton ikan post rigor cukup tinggi rata-rata sebesar 5,23%. Hasil yang diperoleh pada penelitian ini hampir sama dengan penelitian Nurhayati (2013) yang memiliki nilai rendemen yang cenderung meningkat dengan tingginya konsentrasi enzim yang ditambahkan dan lamanya waktu hidrolisis yang digunakan, sehingga hidrolisis jeroan ikan tongkol yang diperolehnya semakin meningkat yakni pada kisaran (3,93-5,54)%.

## Komposisi Asam Amino Pepton Ikan Selar Post Rigor
Produk  pepton ikan selar post rigor memiliki 9 macam asam amino essensial (Tabel 1). Suatu
proses hidrolisis dikatakan berjalan sempurna, jika menghasilkan campuran 18-20 macam asam amino baik essensial maupun non-essensial sehingga dapat dikatakan bahwa pepton ikan selar dihidrolisis mendekati kondisi yang sempurna karena kandungan asam amino yang terdapat pada produk pepton ikan selar post rigor terukur sesuai standar asam amino yang dimiliki ikan.
Hasil tahap ini sesuai dengan penelitian
Nurhayati (2013); Praptono (2006); (Horn et al.
2005) yang menjelaskan bahwa terdapat sekitar 18-20 jenis asam amino baik essensial maupun non-essensial yang diperoleh setelah hidrolisis daging ikan. Horn (2005) juga menambahkan bahwa terdapat 5 jenis asam amino esensial yang diperoleh selama proses hidrolisis jeroan ikan, yakni asam amino arginina, isoleusina, leusina, valina, dan tirosina yang sangat penting untuk pertumbuhan bakteri Lactobacillus plantarum NC8. Wasswa et al.
(2007) juga melaporkan bahwa komposisi asam amino essensial yang dihasilkan dari hidrolisis native grass carp skin hampir sama dengan hasil yang diperoleh pada penelitian ini, yakni histidina  4,42%, isoleusina 1,19%, leusina 2,01%, lisina 2,58%, metionina 1,18%, fenilalanina 1,58%, treonin 1,41%, dan valina 1,65%. Baskhar dan Mahendrakar (2007) menyebutkan hidrolisat protein jeroan ikan menghasilkan 10 jenis asam amino essensial berturut-turut histidina (2,00 g/100 g), isoleusina (3,40 g/100 g), leusina (7,00 g/100 g), lisina (6,98 g/100 g), metionina (2,00 g/100 g), fenilalanina (3,15 g/100 g), tirosina (2,38 g/100 g), treonina (4,12 g/100 g), arginina (11,82 g/100 g), dan valina (4,93 g/100 g). Kandungan asam amino hasil penelitian ini sama dengan analisis protein hidrolisat padat dari limbah pacifi c  whiting (Benjakul dan Morrisey 1997) dan hidrolisis protein yang diteliti Bhaskar et al. (2007). Asam amino essensial merupakan jenis asam amino yang dibutuhkan oleh bakteri untuk tumbuh dan berkembang.

## Perbandingan Karakteristik Pepton Ikan
Selar dengan Pepton Komersial
Karakteristik pepton ikan selar post rigor disajikan pada Tabel 2. Karakteristik
tersebut sebagian besar memenuhi standar pepton komersial pada semua parameter yaitu kelarutan pepton ikan selar post rigor sebesar 96,74% dengan  kandungan TN sebesar 11,86%, α-amino Nitrogen 1,07%, AN/TN sebesar 9,02% dan kadar garam 0,41%. Hasil yang diperoleh hampir mendekati standar yang dimiliki oleh pepton komersial bactopeptone , hal ini serupa dengan laporan Nurhayati (2013) untuk seluruh parameter yang dianalisis.
Safari et al. (2009) menghidrolisis kepala ikan tuna menggunakan enzim alkalase dan menghasilkan total nitrogen sebesar 12,84%. Nilai ini tidak jauh berbeda dengan jumlah total nitrogen yang diperoleh pada pepton ikan selar. Dapat disimpulkan bahwa pepton ikan selar fase post rigor memiliki karakteristik
yang hampir sama dengan pepton komersial dan pepton jeroan ikan tuna.
Aktivitas Pepton Ikan Selar Post Rigor terhadap Daya Dukung  Pertumbuhan
Bakteri
Pertumbuhan bakteri Salmonella sp. (Gambar 3) dan Pseudomonas aeruginosa (Gambar 4) menggunakan media pepton ikan selar memiliki pertumbuhan relatif lebih baik dibandingkan dengan media pepton komersial (Difco). Hasil tersebut menunjukkan bahwa nitrogen pepton ikan selar fase post rigor lebih mudah dikonsumsi oleh S. thypii dan P. aeruginosa dari pada nitrogen pepton komersial (Difco). Garis yang semakin miring menunjukkan kecenderungan mikroba semakin
Tabel 1 Kandungan asam-asam amino essensial produk  pepton ikan selar  ( post rigor ) dibandingkan pepton komersial, gulamah, dan jeroan ikan tongkol
Jenis Asam Amino Jumlah Asam Amino Essensial Pepton (%) Difco 1 Oxoid 2 Pepton gulamah 3 Pepton jeroan ikan tongkol 4 Pepton selar post rigor Histidina 0,80 1,50 4,95 1,47 4,70 Isoleusina 2,10 2,40 2,68 0,88 1,33 Leusina 3,80 5,00 2,61 3,57 4,76 Lisina 3,40 5,80 1,08 3,54 2,76 Metionina 0,70 1,40 1,50 1,03 4,01 Fenilalanina 2,80 2,30 1,27 1,10 2,17 Treonina 1,10 2,60 1,42 1,40 1,25 Valina 2,80 3,60 3,33 1,59 3,82 Arginina 5,80 8,60 2,89 1,07 1,45 Keterangan: 1,2 Bionutrient Technical Manual (2006); 3 Praptono (2006); 4 Suhandana (2010)
Tabel 2 Karakteristik pepton ikan selar post rigor dibandingkan
dengan bactopeptone Karakteristik Pepton ikan selar post rigor Bactopeptone * Kelarutan (dalam air) 96,74 100 Total Nitrogen (TN) 11,86 12-13 α-amino Nitrogen 1,07 1,2-2,5 AN/TN 9,02 11-21 Kadar Garam (NaCl) 0,41 ≤17 Keterangan: *Bionutrient Technical Manual (2006); AN= Amino
nitogren; TN= Total nitrogen
mudah mikroba mengonsumsi nitrogen berarti dalam media. Pemakaian nitrogen oleh masing-masing bakteri berbeda-beda hal ini disebabkan perbedaan kemampuan bertahan hidup dari masing-masing bakteri.
Tingginya nilai konsumsi nitrogen pada pepton ikan selar dibanding pepton komersial disebabkan oleh mudahnya ikatan nitrogen pada pepton ikan selar untuk diurai oleh bakteri. Hasil yang diperoleh sesuai dengan penelitian  Praptono (2006) dan Nurhayati (2013) melaporkan bahwa daya dukung pepton ikan gulamah lebih baik bila dibandingkan pepton komersial. Poernomo dan Buckle (2002) dalam penelitianya menyatakan bahwa aplikasi pepton campuran ray viscera sillage memiliki daya dukung yang baik terhadap pertumbuhan bakteri S. aureus dan B. subtilis dibandingkan pepton komersial (Difco). Kurbanoglu (2002) juga menyampaikan bahwa penggunaan media pepton asal ikan dapat mendukung pertumbuhan bakteri Salmonella sp., Enterobacter aerogenes, S. aureus dan jenis lainnya yaitu berkisar pada (7,00- 10,16) log CFU/mL.
Aplikasi pepton sebagai media sederhana pertumbuhan bakteri juga dilaporkan oleh Klompong et al. (2010), menunjukkan bahwa S. aureus yang ditumbuhkan pada media berisi pepton ikan yang dihidrolisis menggunakan enzim alkalase memiliki kecepatan pertumbuhan maksimum (μmax) yang lebih baik dibandingkan pepton komersial yakni sebesar 0,98 dengan derajat hidrolisi 15%, sedangkan bakteri S. aureus yang ditumbuhkan pada media NB yang berisi bactopeptone adalah sebesar 0,97. Perbedaan kecepatan maksimum pertumbuhan S. aureus yang ditumbuhkan pada media dengan beberapa macam protein hidrolisat dan bactopeptone diduga disebabkan oleh perbedaan ukuran peptida.

## KESIMPULAN
Ikan-ikan hasil tangkap sampingan (HTS) tidak layak konsumsi (selar) dapat digunakan sebagai bahan baku untuk menghasilkan pepton ikan. Proses hidrolisis ikan selar dilakukan menggunakan enzim papain dengan kondisi optimum konsentrasi enzim 0,26% dengan waktu hidrolisis terbaik untuk semua perlakuan adalah  6 jam pada suhu 60oC, pepton ikan selar memiliki karakteristik: kelarutan (dalam air) sebesar 96,74%; total nitrogen (TN) 11,86%;  α-amino nitrogen 1,07%;  AN/ TN 9,02%; dan kadar garam (NaCl) 0,41% yang sesuai dengan standar pepton komersial, dan uji pertumbuhan bakteri pepton ikan selar pada perlakuan tersebut lebih baik bila dibandingkan dengan pepton komersial.

## DAFTAR PUSTAKA
[AOAC] Association of Offi cial  Analytical Chemyst. 2005. Offi cial Method of Analysis of Th e Association of Offi cial  Analytical of Chemist . Arlington. Virginia, USA: Published by Th e Association of Offi cial Analytical Chemist.Inc.
Aspmo SI, Horn SJ, Eijsink VGH. 2005.
Use of hydrolysates from Atlantic cod ( Gadus morhua L.) viscera as a complex nitrogen source for lactic acid bacteria.
Gambar 3 Perbandingan laju pertumbuhan bakteri S. typhii dengan media: ( ) pepton ikan selar post rigor ; ( ...... ) bactopeptone .
Gambar 4 Perbandingan laju pertumbuhan bakteri P. aeruginosa dengan media: ( ...... ) pepton ikan selar post rigor; ( ...... ) bactopeptone .

## Journal of FEMS Microbiology Letters
248: 65-68.
Benjakul S, Morrisey MT. 1997. Protein hydrolysate from Pacifi c Whiting solid waste. Journal of Agricultural and Food Chemistry 61(1/2): 131-138.
Beuchat LR. 1974. Preparation and evaluation of a microbiological growth medium formulated from catfi sh waste peptone. Journal of Milk and Food Technology 37: 277-281.
Bhaskar N, Mahendrakar NS. 2008. Protein
hydrolysate from visceral waste proteins of Catla ( Catla catla ): Optimization of hydrolysis conditions for a commercial neutral protease. Journal of Bioresource Technology 99: 4105-4111.
Bhaskar N, Th omas B, Radha C, Lalitha RG. 2007. Optimization of enzymatic hydrolysis of visceral waste proteins of Catla ( Catla catla ) for preparing protein hydrolysate using a commercial protease. Journal of Bioresource Technology 99: 335-343. Bionutrient Technical Manual. 2006. Bionutrient technical manual. http:// bd.com. [20 Juli 2010]
[BPS] Biro Pusat Statistik. 2005. Perdagangan Luar Negeri . Jakarta: BPS.
Clausen E, Gildberg A, Raa J. 1985. Preparation and testing of an autolysate of fi sh viscera as growth substrate for bacteria. Journal of
Applied and  Environmental Microbiology
50(6): 1556-1557.
Desniar, Nurhayati T, Suhartono MT, Isa EM. 2006. Modifi kasi  media marine broth pada produksi inhibitor protease dari bakteri Acinetobacter baumani yang hidup bersimbiosis dengan sponge Plakortis nigra . Buletin Teknologi Hasil Perikanan 1: 70-79.
Dufossë L, Broise DDL, Guerard F. 2001. Evaluation of nitrogenous substrates such as peptones from fi sh: a new methode on gompertz modeling of microbial growth. Journal of Microbiology 42: 32-38. doi:
10.1007/s002840010174.
Fachraniah, Fardiaz D, Idiyanti T. 2002.
Pembuata pepton dari bungkil kedelai
dan khamir dengan enzim papain untuk media pertumbuhan bakteri. Jurnal Teknologi dan Industri Pangan 13(3).
Gildberg A, Batista I, Strom  E. 1989.
Preparation and characterisation of peptones obtained by a two-step enzymatic hydrolysis of whole fi sh. Journal of Biotechnology and Applied Biochemistry 11: 413-423.
Green JH, Paskell SL, Goldmintz D. 1977. Fish peptones for microbial media developed from red hake and from a fi shery  by- product. Journal of Food Protection 40: 181-186.
Hidayat T. 2005. Pembuatan hidrolisat protein dari ikan selar kuning ( Caranx leptolepis ) dengan menggunakan enzim papain. [skripsi]. Bogor: Teknologi Hasil Perairan, Institut Pertanian Bogor. Horn SJ, Aspmo SI, Eijsink VGH. 2005. Growth of Lactobacillus plantarum in media containing hydrolysates of fi sh viscera. Journal of Applied Microbiology 99: 1082-1089. Jassim S, Salt WG, Stretton  RJ. 1988. Th e preparation and use of media based on a simple fi sh waste extract. Letters in Applied Microbiology 6: 139-143.
Klompong V, Benjakul S, Kantachote D, Shahidi F. 2010. Use of protein hydrolysate from yellow stripe trevally ( Selaroides leptolepis ) as microbial media.
Food Bioprocess Technology [online]. http://www.springerlink.com/content/ jj523r7020363347/ [24 Desember 2010] Kristinsson HG, Rasco BA. 2000. Fish protein hydrolysates: production, biochemical, and functional properties. Journal of Food Science and Nutrition 1(40): 43-81.
Kurbanoúlu EB, Algur mer F. 2002. Use of ram horn hydrolysate as peptone for bacterial growth. Turkish Journal of Biology 26: 115-123. Nurhayati T, Desniar, Suhandana M. 2013.
Pembuatan pepton secara enzimatis menggunakan bahan baku jeroan ikan tongkol. Jurnal Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia 16(1): 01-11.
JPHPI 2013, Volume 16 Nomor 3
Produksi dan aplikasi pepton ikan, Saputra D, Nurhayati T
Poernomo A, Buckle KA. 2002. Crude peptones from cowtail ray ( Trygon sephen ) viscera as microbial growth media. World Journal of Microbiology and Biotechnology 18: 333-340. Praptono B. 2006. Produksi pepton ikan gulamah ( Argyrosomus sp.) sebagai sumber nitrogen media pertumbuhan mikroba [skripsi]. Bogor: Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Institut Pertanian Bogor. Safari R, Motamedzadegan A, Ovissipour M, Regenstein JM, Gildberg A, Rasco B. 2009. Use of hydrolysates from yellowfi n  tuna ( Th unnus albacares ) heads as a complex nitrogen source for lactic acid bacteria.
Journal of Food Bioprocess Technology . doi: 10.1007/s11947-009-0225-8. Souissi N, Bougatef A, Ellouz YT, Nasri M.
2009. Production of lipase and biomass by Staphylococcus simulans grown on sardinella ( Sardinella aurita ) hydrolisate and peptone. African Journal of Biotechnology 8: 451-457. Strasdine GA,  Melville JM. 1972. Salmon- canning waste water as a microbiological growth medium. Journal of the Fisheries Research Board of Canada 29: 1769-1771.
Strom T, Raa J. 1993. Marine biotechnology in
Norway. Journal of Marine Biotechnology 1: 3-7.
Th iansilakul Y, Benjakul S, Shahidi F. 2007. Compositions, functional, and antioxidative of protein hydrolisates prepared from round scad ( Decapterus maruadsi ). Journal of Food Chemistry
103: 1385-1394.
Tonkova EV, Nustorova M, Gushterova A. 2007. New protein hydrolysates from collagen wastes used as peptone for bacterial growth. Journal of Current Microbiology 54: 54-57. doi: 10.1007/
s00284-006-0308-y.
Wasswa J, Tang  J, Gub X, Yuan X. 2007.
Infl uence of the extent of enzymatic hydrolysis on the functional properties of protein hydrolysate from grass carp ( Ctenopharyngodon idella ) skin. Journal of Food Chemistry 104: 1698-1704. Yin SW, Chuan-He T, Jin-Song C, Er-Kun H, Qi-Biao W, Xiao-Quan Y. 2008. Eff ects of limited enzymatic hydrolysis with trypsin on the functional properties of hemp ( Cannabis L.) protein isolate. Journal of Food Chemistry 106: 1004-1013.