e - ISSN 2685-3167
(The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158
Formulasi Dan Uji Aktivitas Antibakteri Sediaan Sabun Cair Ekstrak Daun Jarak Tintir Jatropha Multifidi L.
Aldo J. Pananginan 1* , Hariyadi 2 , Vlagia Paat 2 , Yappy Saroinsong 2
1 Program Studi Farmasi, Fakultas MIPA, Universitas Kristen Indonesia Tomohon
2 Program Studi Biologi, Fakultas MIPA, Universitas Kristen Indonesia Tomohon
*Penulis Koresponden; aldopananginan30@gmail.com Diterima : 24 Januari 2020 ; Disetujui : 01 Februari 2020

## ABSTRAK
Sabun adalah produk yang dihasilkan dari reaksi antara asam lemak dengan basa kuat yang berfungsi untuk  mencuci  dan  membersihkan  lemak  atau  kotoran. Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk  membuat sabun cair ekstrak daun jarak tintir dan  melakukan pengujian aktivitas antibakteri sediaan sabun cair ekstrak daun jarak tintir terhadap bakteri Staphylococcus aureus . Penelitian ini merupakan eksperimen laboratorium.  Metode  yang  digunakan  adalah  difusi  sumuran.  Hasil  penelitian  menunjukkan  sediaan sabun cair ekstrak daun  jarak tintir  memiliki aktivitas antibakteri  ditandai dengan terbentuknya zona hambat. Dari hasil penelitian dapat disimpulkan bawah formulasi sediaan sabun cair ekstrak daun jarak tintir dengan konsentrasi 20% dan 30% telah memenuhi persyaratan yang sesuai dengan standar yang ditetapkan SNI 06-4085-1996. Sedangkan pada konsentrasi 10% dalam uji bobot jenis tidak memenuhi persyaratan.  Formulasi  sediaan  sabun  cair  ekstrak  daun  jarak  tintir  memiliki  aktivitas  antibakteri terhadap  bakteri S.  aureus yaitu  pada  konsentrasi  10%  zona  hambat  4.9  mm,  konsentrasi  20%  zona hambat 6.3 mm, dan konsentrasi 10% zona hambat 7.5 mm.
Kata kunci : daun jarak tintir, sabun cair, Staphylococcus aureus, antibakteri

## ABSTRACT
Soap  is  a  product  that  is  produced  from  the  reaction  between  fatty  acids  with  strong  bases  whose function is to wash and clean fat or impurities. The purpose of this study was to make Jatropha leaf extract  liquid  soap  and  examine  the  antibacterial  activity  of  Jatropha  leaf  extract  liquid  soap  for Staphylococcus  aureus  bacteria.  This  research  is  a  laboratory  experiment.  The  method  used  is  well diffusion.  The  results  showed  that  the  liquid  Jatropha  leaf  extract  has  antibacterial  properties characterized by the formation of inhibitory zones. From the results of this study, it can be concluded that the formulation of Jatropha leaf extract liquid soap with a concentration of 20% and 30% has met the requirements in accordance with the standards established by SNI 06-4085-1996. While the 10% concentration in the specific gravity test did not meet the requirements. S. aureus is at a concentration of  10% inhibition zone  4.9  mm,  concentration  of  20%  inhibition  zone  6.3  mm,  and  concentration  of 10% inhibition zone 7.5 mm.
Keywords: Jatropha leaf, liquid soap, Staphylococcus aureus, antibacterial

## PENDAHULUAN
Kebersihan  merupakan  hal  yang  sangat penting karena semakin banyaknya penyakit yang timbul  karena  kuman  [1].  Kulit  manusia merupakan perlindungan utama terhadap berbagai  jenis  mikroorganisme  yang  menyerang imun tubuh [2]. Kulit merupakan bagian dari
tubuh  yang  melindungi  bagian  dalam  tubuh  dari gangguan fisik maupun mekanik, gangguan panas atau  dingin,  gangguan  sinar  radiasi  atau  sinar ultraviolet dan gangguan kuman.
Hal  tersebut  memicu  kebutuhan  akan perlindungan kulit dengan menggunakan kosmetika seperti sabun.  Sabun cair adalah jenis

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167 (The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158
sabun  yang  berbentuk  liquid  (cairan)  sehingga mudah  dituangkan  dan  menghasilkan  busa  yang lebih  banyak  dan  tampak  lebih  menarik  [3]. Dewasa ini, penggunaan sabun antibakteri sangat diminati oleh masyarakat karena dipercaya dapat membersihkan  kulit,  juga  dapat  mengobati  dan mencegah penyakit yang disebabkan oleh bakteri [4].
konsentrasi  10%,  20%  dan  30%  memiliki  zona hambat dengan rata-rata diameter zona 10.1 mm, 14.5mm dan 18.5mm.
Berdasarkan  latar  belakang  tersebut,  maka penulis  ingin  melakukan  penelitian  tentang “Formulasi  Dan  Uji  Aktivitas  Antibakteri Sediaan Sabun Cair Ekstrak Daun Jarak Tintir”.
Bakteri Staphylococcus  aureus merupakan bakteri flora normal pada kulit dan selaput lendir pada manusia. Bakteri S. aureus adalah salah satu bakteri gram positif yang dapat ditemukan hidup di kulit hidung, tenggorokan, ketiak, sela jari kaki dan  perineum  [5]. S.  aureus dapat  menjadi patogen  jika  mereka  masuk  ke  jaringan  bawah kulit  dan  ke  peredaran  darah  sehingga  dapat menyebar ke organ lain dan meyebabkan infeksi. Infeksi  tersebut  bervariasi  mulai  dari  keracunan, infeksi  kulit  ringan  seperti  jerawat  dan  bisul, sampai infeksi berat seperti meningitis, osteomielitis, pneumonia dan mastitis [6].
Salah  satu  tumbuhan  obat  yang  berpotensi untuk dimanfaatkan dalam pembuatan sabun cair antibakteri adalah tumbuhan jarak tintir (Jatropha multifida  L) .  Secara  empiris  jarak  tintir dimanfaatkan  getahnya  sebagai  obat  luka  oleh masyarakat Indonesia sejak lama, lebih khusus di pulau  Jawa  dan  Sulawesi  [7].  Getah  tanaman jarak tintir terbukti dapat mempercepat penyembuhan  luka  dibandingkan  povidon  iodin 10%  [8].  Masyarakat  di  kabupaten  Minahasa Tenggara  lebih  khusus  di  kecamatan  Ratahan telah  banyak  memanfaatkan  tanaman  jarak  tintir sebagai obat untuk luka baru dan dipercaya dapat mencegah  infeksi  pada  luka  yang  digunakan dengan  cara  mengoleskan  getah  batang  dan daunnya pada luka baru.
Hasil penelitian pendahuluan yang dilakukan oleh  peneliti  terhadap  skrining  fitokimia  bahwa daun  jarak  tintir  mengandung  senyawa  alkaloid, saponin,  tanin,  fenol,  flavonoid  dan  triterpenoid. Berdasarkan  pra  penelitian  yang  dilakukan  oleh peneliti terhadap aktivitas antibakteri menunjukkan  bahwa  sediaan  sabun  cair  ekstrak daun  jarak  tintir  memiliki  aktivitas  antibakteri terhadap bakteri Staphylococcus aureus . Pengujian  ekstrak  daun  jarak  tintir  terhadap bakteri Staphylococcus  aureus dengan

## METODE PENELITIAN

## Waktu Dan Tempat Penelitian
Waktu penelitian dilaksanakan selama bulan November sampai bulan Desember 2019.
Penelitian  ini  dilaksanakan  di  Laboratorium Terpadu Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Kristen Indonesia Tomohon  (UKIT)  dan  di  Laboratorium  Fakultas Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam, Universitas Sam Ratulangi Manado (UNSRAT).

## Alat Dan Bahan
Blender,  toples,  neraca  analitik,  hot  plate, batang pengaduk, gelas ukur, gelas kimia, kertas saring, rotary evaporator, pH meter, piknometer, pipet,  pisau  potong,  cawan  petri,  microtube, autoclave, enlenmeyer, mistar, spatula, incubator, wadah,  kamera, magnetic  stirrer , Laminar  Air Flow (LAF), tabung reaksi, kawat ose, pembakar bunsen, pecandang, pingset, handscoon, masker.
Daun  jarak  tintir,  minyak  zaitun,  kalium hidroksida  (KOH),  carboksil  metal  celulosa (CMC), sodium laurel sulfat (SLS), asam stearate, butyl  hidroksi  anisol  (BHA),  anisi  sintetis, aquades,  nutrient  agar  (NA),  etanol  96%, aluminium  foil,  bakteri Staphylococcuss  aureus ATCC 25932 dan sabun cair dettol.

## Pembuatan Ekstrak
Proses  ekstraksi  dilakukan  dengan  metode maserasi, yaitu daun jarak tintir dikeringkan, lalu diserbukkan.  Sebanyak  550  g  serbuk  simplisia daun  jarak  tintir  dimasukkan  ke  dalam  wadah, kemudian dimaserasi dengan pelarut etanol 96%. Ditutup  dengan  aluminium  foil  dan  dibiarkan selama lima hari sambil sesekali diaduk. Setelah lima  hari,  sampel  yang  dimaserasi  tersebut disaring  menggunakan  kertas  saring  sehingga

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167 (The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158
menghasilkan filtrat I dan residu I.
Residu  yang  ada  kemudian  diremaserasi dengan  pelarut  etanol  96%,  ditutup  dengan aluminium  foil  dan  dibiarkan  selama  dua  hari sambil sesekali  diaduk. Setelah dua hari, sampel tersebut  disaring  menggunakan  kertas  saring, sehingga  menghasilkan  filtrat  II  dan  residu  II. Filtrat  I  dan  II  digabungkan,  lalu  diuapkan menggunakan  rotary  evaporator pada  suhu  40  C sehingga  diperoleh  ekstrak  kental  daun  jarak tintir.

## Skrining Fitokimia
1. Uji Alkaloid
Ekstrak daun jarak tintir sebanyak 0.2 gram dimasukan kedalam tabung reaksi lalu ditambahkan 10 tetes kloroform dan 10 tetes asam ammonia  kemudian  tambahkan  10  tetes  H 2 SO 4 2N  (Asam  sulfat)  ,  diamkan  hingga  terbentuk  2 lapisan.  Lapisan  atas  dipindahkan  ke  dalam  3 tabung  reaksi  kemudian  pada  masing-masing tabung  diteteskan  reagen  wagner,  reagen  mayer dan reagen dragendrof. Hasil positif menunjukan adanya endapan jingga untuk reagen dragendrof, endapan  putih  untuk  reagen  mayer  dan  endapan coklat untuk reagen wagner.
2. Uji Flavonoid
Ekstrak daun jarak tintir sebanyak 0.2 gram masukkan  dalam  tabung  reaksi  lalu  tambahkan etanol sebanyak 5 mL dan di panaskan selama 5 menit. Selanjutnya tambahkan beberapa tetes HCl
pekat  dan  ditambahkan  0.2  gram  bubuk  Mg ( Magnesium ), lalu di amati. Hasil positif dengan menunjukan warna merah tua.
3. Uji Saponin
Ekstrak  daun  jarak  tintir  sebanyak  0.2  gram dimasukkan  ke  dalam  tabung  reaksi,  kemudian tambahkan  aquades  hingga  seluruh  ekstrak terendam, kemudian panaskan selama 2-3 menit, selanjutnya  didinginkan,  lalu  dikocok  kuat-kuat. Hasil positif dengan terbentuknya buih.
4. Uji Tanin
Ekstrak  daun  jarak  tintir  sebanyak  0.2  gram di  masukkan  ke  dalam  tabung  reaksi  dan ditambahkan  dengan  etanol  sampai  ekstrak terendam,  kemudian  ditambahkan  2-3  tetes larutan  FeCl 3. Hasil  Positif  dengan  terbentuknya warna hitam kebiruan atau hijau.
5. Uji Triterpenoid
Ekstrak daun jarak tintir sebanyak 0.2 gram di  masukkan  ke  dalam  tabung  reaksi  dan tambahkan  dengan  asam  asetat  glasial  sampai semua  ekstrak  terendam,  dibiarkan  selama  15 menit  lalu  ditambahkan  2-3  tetes  asam  sulfat pekat.  Hasil  Positif  dengan  terbentuknya  warna merah.
6. Uji Fenol
Ekstrak daun jarak tintir sebanyak 0,2
gram dimasukan ke dalam tabung reaksi kemudian ditambahkan 2-3 tetes FeCl 3 5%.
Hasil positif  dengan terjadi perubahan warna menjadi coklat orange.
Tabel 1. Formulasi Sabun Cair [9]
Ekstrak daun Jarak Tintir Zat Aktif 0% 10% 20% 30% Minyak Zaitun Asam Lemak 30% 30% 30% 30% KOH Alkali 16% 16% 16% 16% CMC Pengental dan Pengisi 1% 1% 1% 1% SLS Pembusa 1% 1% 1% 1% Asam stearat Penetral 0,5% 0,5% 0,5% 0,5% BHA Antioksidan 1% 1% 1% 1% Anisi Sintetis Pewangi 2% 2% 2% 2% Aquades Pelarut Bahan 100% 100% 100% 100% Bahan Fungsi Bahan Basis sabun cair Formula (%) I Formula (%) II Formula (%) III (1) (2) (3) (4) (5) (6)

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167
(The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158

## Pembuatan Sabun Cair Antibakteri Ekstrak Daun Jarak Tintir
Semua  bahan  yang  akan  digunakan ditimbang terlebih  dahulu sesuai dengan takaran yang  dianjurkan.  Dimasukkan  minyak  zaitun sebanyak 15 mL ke dalam gelas kimia, kemudian ditambahkan  dengan  kalium  hidroksida  (KOH) 40%  sebanyak  8  mL  sedikit  demi  sedikit  sambil terus  dipanaskan  pada  suhu  50  C  hingga mendapatkan sabun pasta. Sabun pasta ditambahkan  dengan  15  mL  aquades,  lalu dimasukkan karboksi metil selulosa (CMC) yang telah dikembangkan dalam aquades panas, diaduk hingga  homogen.  Kemudian  ditambahkan  asam stearat, diaduk hingga homogen.
Ditambahkan  sodium  laurel  sulfat  (SLS), diaduk  hingga  homogen.  Ditambahkan butyl hidroksi  anisol (BHA),  lalu  diaduk  hingga homogen.  Ditambahkan  pengaroma,  diaduk hingga homogen. Dimasukkan ekstrak daun jarak tintir,  diaduk  hingga  homogen.  Sabun  cair ditambahkan  dengan  aquades  hingga  volume  50 mL,  dimasukkan  ke  dalam  wadah  bersih  yang telah disiapkan.
Pembuatan sabun cair ekstrak etanol  daun jarak  tintir  disesuaikan  dengan  masing-masing konsentrasi. Setelah itu dilakukan uji mutu sabun cair  ekstrak  daun  jarak  tintir  dengan  uji organoleptik, uji pH, tinggi busa dan bobot jenis [10]

## Evaluasi Sediaan Sabun Antiseptik
a. Uji Organoleptik
Uji  ini  dilakukan  dengan  cara  dilihat  dari bentuk, warna, dan bau sediaan sabun cair ekstrak daun jarak tintir [4].
b. Uji pH
Pengukuran  pH  diukur  pada  masing- masing formulasi sabun ekstrak daun jarak tintir dengan menggunakan pH meter [4].
c. Uji Tinggi dan Kestabilan Busa
Sampel  sabun  cair  sebanyak  1  g dimasukkan ke dalam tabung berskala yang berisi 10  ml  aquades  dan  kemudian  di  tutup.  Tabung dikocok selama 20 detik dan dihitung tinggi busa yang terbentuk [9]. d. Uji Bobot Jenis
Piknometer  dikeringkan  dan  ditimbang. Air  dimasukkan  ke  dalam  piknometer  dan ditimbang.  Pekerjaan  diulangi  dengan  memakai sampel sabun cair sebagai pengganti air [9].

## Bobot Jenis =
𝑏𝑜𝑏𝑜𝑡 𝑝𝑖𝑘𝑛𝑜𝑚𝑒𝑡𝑒𝑟 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 − 𝑏𝑜𝑏𝑜𝑡 𝑝𝑖𝑘𝑛𝑜𝑚𝑒𝑡𝑒𝑟 𝑘𝑜𝑠𝑜𝑛𝑔 𝑏𝑜𝑏𝑜𝑡 𝑝𝑖𝑘𝑛𝑜𝑚𝑒𝑡𝑒𝑟 𝑎𝑞𝑢𝑎𝑑𝑒𝑠 − 𝑏𝑜𝑏𝑜𝑡 𝑝𝑖𝑘𝑛𝑜𝑚𝑒𝑡𝑒𝑟 𝑘𝑜𝑠𝑜𝑛𝑔
Pengujian Aktivitas Antibakteri Pembuatan  Larutan  Nutrient  Agar  (NA)  dan Media Agar Miring
Untuk  larutan Nutrient  Agar (NA), sebanyak  2.8  g  dilarutkan  dengan  100  mL aquadest dalam erlenmeyer, selanjutnya dihomogenkan  dengan magnetic  stirrer ,  larutan NA  digunakan  untuk  pembuatan  media  agar miring  [11].  Sebanyak  5  mL  Larutan  NA dituangkan  dalam  tabung  reaksi  dan  diletakan dengan  posisi  miring  dan  dibiarkan  hingga memadat.  Media  agar  miring  digunakan  untuk peremajaan bakteri uji.

## Sterilisasi alat
Alat-alat  yang  akan  digunakan  dalam pengujian  dicuci  bersih  kemudian  dikeringkan. Setelah  itu,  dibungkus  dengan  aluminium  foil kemudian disterilkan bersama dengan media NA menggunakan  autoclave  pada  tekanan  1  atm dengan suhu 121 o C selama15 menit [12].

## Peremajaan Bakteri
Bakteri Staphylococcus  aureus yang berasal dari biakan murninya, diambil sebanyak 1 ose kemudian diinokulasikan dengan cara digores pada  medium  Nutrient  Agar  (NA)  miring kemudian diinkubasi pada suhu 37 o C selama 18- 24 jam [13].

## Pembuatan Suspensi Bakteri Uji
Bakteri uji yang telah diremajakan, diambil satu ose kemudian disuspensikan kedalam 10 mL larutan NaCl 0,9% steril, setelah itu dihomogenkan [13].

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167
(The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158

## Pembuatan  Media  Dasar  dan  Pembenihan Nutrien Agar (NA)
Pembuatan  media  dilakukan  dengan  cara menyiapkan  bahan-bahan  untuk  medium  yaitu dengan  menimbang  media Nutrient  Agar (NA) sebanyak  5.6  gr  kemudian  dilarutkan  dengan aquades  sebanyak  200  ml.  kemudian  diaduk hingga  homogen,  setelah  homogen  disterilkan dengan  autoclave  pada  suhu  121 0 C  selama  15 menit [14]

## Pembuatan  Media  Pengujian  dan  Pengujian Antibakteri
Media  ini  dibuat  dengan  menggunakan metode difusi sumuran dengan cara menuangkan larutan  Nutrient  agar  sebanyak  15  mL  ke  dalam cawan  petri  untuk  media  dasar  kemudian dibiarkan  memadat. Setelah  memadat diletakkan pecandang  (sumuran)  berukuran  7  mm  yang diatur  jaraknya  agar  daerah  pengamatan  tidak bertumpu.  Selanjutnya  campurkan  suspensi bakteri kedalam media pembenihan nutrient agar, dan  dituangkan  15  mL  NA  kedalam  media pembenihan untuk lapisan kedua. Setelah lapisan kedua  memadat,  pecandang  (sumuran)  diangkat secara  aseptik  dari  cawan  petri  sehingga terbentuklah  sumur-sumur  yang  akan  digunakan dalam pengujian antibakteri.
Basis sabun (kontrol negatif), sabun dettol (kontrol  positif)  dan  sediaan  sabun  cair  dengan konsentrasi  10%,  20%,  dan  30%  ditimbang masing-masing  sebanyak  0.1  Gram  kemudian diteteskan  pada  sumuran.  Kemudian  diinkubasi pada suhu 37 0 C selama 24 jam. Setelah diinkubasi selama 24 jam, dilakukan pengamatan.

## Cara Perhitungan Zona Hambat
Perhitungan diameter zona hambat [15]: Rumus :  D = 𝑑1+𝑑2 − X……… (1) 2
>20  mm  dikategorikan  sangat  kuat,  11-20  mm dikategorikan  kuat,  6-10  mm  dikategorikan sedang dan <5 mm dikategorikan lemah [16].

## Variabel yang diamati
Dilakukan pengamatan pada sediaan sabun cair  ekstrak  daun  jarak  tintir  dengan  pengujian organoleptik,  pengujian  pH,  pengujian  tinggi busa,  pengujian  bobot  jenis  dan  pengujian aktivitas antibakteri sabun cair ekstrak daun jarak tintir.

## Analisis Data
Data hasil penelitian untuk pengujian organoleptiik, pengujian pH, pengujian tinggi dan kestabilan  busa  dan  pengujian  bobot  jenis ditabulasi dan dianalisis secara deksriptif dengan melihat  perbandingan  konsentrasi  mana  yang memenuhi  persyaratan,  selanjutnya  ditampilkan dalam  bentuk  tabel.  Data  hasil  pengujian  daya antiseptik  dianalisis  menggunakan  uji  ANOVA ( Analysis  of  variant )  tingkat  kepercayaan  95 % (α=0,05).)  Jika  ada  perbedaan  yang  signifikan maka  dilanjutkan  dengan  uji  LSD  ( Least Significant  Different )  untuk  melihat  konsentrasi mana yang memberikan pengaruh yang berbeda.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil  ekstraksi  daun  jarak  tintir  diperoleh sebanyak  7  liter  filtrat  yang  berwarna  Hijau Kehitaman. Seluruh filtrat dipekatkan menghasilkan  ekstrak  kental  sebanyak  61.91 gram.
Setelah didapatkan ekstrak kental, selanjutnya  ekstrak  di  uji  fitokimia  dengan menggunakan  metode  reaksi  warna.  Hasil  yang diperoleh dapat dilihat pada Tabel 5.
Keterangan : d1 = diameter vertikal zona bening pada media. d2 = diameter horizontal zona bening pada media. X = lubang sumuran
Berdasarkan perhitungan luas zona hambat yang  diamati  pada  media,  zona  hambat  dapat dikategorikan  sebagai  berikut  :  untuk  diameter

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167
(The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158
Tabel 1. Skrining Fitokimia No Senyawa Hasil Keterangan (1) (2) (3) (4) 1. Alkaloid Reagen Dragendroff + Terbentuk Endapan Jingga Reagen Mayer + Terbentuk Endapan Putih Reagen Wagner + Terbentuk Endapan Coklat 2. Flavonoid + Terbentuk Warna Merah tua 3. Saponin + Terbentuk Buih yang Stabil 4. Tanin + Terbentuk Warna Hijau 5. Triterpenoid + Terbentuk Warna Merah 6. Fenol + Terbentuk Warna Coklat Orange
Pada  Tabel  5.  menunjukkan  ekstrak  daun  jarak tintir  mengandung  senyawa  alkaloid,  flavonoid, saponin,  tanin,  triterpenoid  dan  fenol.  Senyawa alkaloid,  flavonoid,  saponin,  fanin  dan  fenol merupakan senyawa kimia yang memiliki potensi sebagai antibakteri [2].

## Evaluasi Mutu Sabun Cair
Evaluasi mutu sabun yang dilakukan terdiri dari uji oranoleptik, uji pH, uji tinggi busa dan uji bobot  jenis.  Pengujian  ini  bertujuan  untuk mengetahui mutu dari sediaan sabun cair apakah sesuai  atau  tidak  dengan  standar  yang  telah ditetapkan oleh SNI 06-4085-1996.
A. Pengujian Organoleptik Tabel 2. Hasil Pengujian Organoleptik Sediaan Bentuk Bau Warna (1) (2) (3) (4) Basis Sabun Cair Cair Anisi Sintetis Putih Kekuningan Konsentrasi 10% Cair Ekstrak Daun Jarak Tintir Hijau Kehitaman Konsentrasi 20% Cair Ekstrak Daun Jarak Tintir Hijau Kehitaman Konsentrasi 30% Cair Ekstrak Daun Jarak Tintir Hijau Kehitaman
Uji organoleptik dimaksudkan untuk melihat tampilan  fisik  suatu  sediaan  yang  meliputi bentuk, warna, dan bau. Standar yang ditetapkan oleh SNI, sabun cair harus memilliki bentuk cair, serta warna dan bau yang khas. Bentuk dari sabun yang  dihasilkan  pada  penelitian  ini  yaitu berbentuk  cair.  Bau  yang  dihasilkan  pada  basis sabun  yaitu  bau  anisi  sintetis  sedangkan  sabun
dengan  konsentrasi  10%,  20%  dan  30% menghasilkan bau khas ekstrak daun jarak tintir. Basis  sabun  cair  berwarna  putih  kekuningan sedangkan sabun pada konsentrasi 10%, 20% dan 30% berubah menjadi  warna hijau kehitaman disebabkan oleh penambahan ekstrak daun jarak tintir.
B. Pengujian pH Tabel 3. Hasil Uji pH Sediaan pH (1) (2) Basis Sabun Cair 9,32 Konsentrasi 10% 8,18 Konsentrasi 20% 8,62 Konsentrasi 30% 9,34

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167 (The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158
Uji pH  merupakan  salah satu  syarat  mutu sabun  cair.  Hal  tersebut  karena  sabun  cair  akan kontak  langsung  dengan  kulit  dan  dapat menimbulkan masalah  apabila pH-nya  tidak sesuai  [10].  Menurut  SNI  06-4085-1996,  untuk pH sabun cair yang memenuhi syarat adalah 8-11.
Dari  data  yang  diperoleh  basis  sabun  cair
memiliki pH 9,32, konsentrasi 10% memiliki pH 8,18,  konsentrasi  20%  memiliki  pH  8,62  dan konsentari  30%  memiliki  pH  9,34.  Hal  ini disebabkan  karena  penambahan  ekstrak  daun jarak  tintir  yang  berbeda  variasi.  Hasil menunjukan  semua  formula  sabun  cair  yang dihasilkan memenuhi kriteria.
C. Pengujian Tinggi Busa Tabel 4. Hasil Uji Tinggi Busa Sediaan Tinggi Busa (mm) (1) (2) Basis Sabun Cair 59mm Konsentrasi 10% 65mm Konsentrasi 20% 68mm Konsentrasi 30% 60mm
Salah  satu  daya  tarik  dari  sabun  adalah kandungan  busanya.  Fungsi  busa  dalam  sabun untuk  mencegah  redeposisi  artinya  agar  partikel kotoran yang sudah terlarut di air oleh sabun tidak terjatuh  atau  mengendap  lagi,  sehingga  kotoran dapat dibuang bersama air sabunnya. Berdasarkan  SNI  06-4085-1996,  syarat  tinggi busa dari sabun cair yaitu 13-220 mm.
Pengujian  tinggi  busa  menggunakan tabung  dan  diukur  ketinggiannya  menggunakan mistar berskala, dari hasil pengamatan tinggi busa
yang didapat dari basis sabun 59 mm, konsentrasi 10% tinggi busa yang didapat 65 mm, konsentrasi 20%  tinggi  busa  yang  didapat  68  mm,  dan konsentrasi 30% tinggi busa yang didapat 60 mm. Berdasarkan  hasil  penelitian  yang  diperoleh, terbukti bahwa dengan penambahan ekstrak daun jarak tintir dapat mempengaruhi ketinggian busa yang  ada.  Tinggi  busa  sabun  antiseptik  ekstrak daun  jarak  tintir  telah  memenuhi  standar  sabun cair yang ditetapkan oleh SNI 06-4085-1996.
D. Pengujian Bobot Jenis Tabel 5. Hasil Uji Bobot Jenis Sediaan Bobot Jenis (g/mL) (1) (2) Basis Sabun Cair 0.9702 Konsentrasi 10% 0.9355 Konsentrasi 20% 1.0661 Konsentrasi 30% 1.0218 Pengujian bobot jenis dilakukan untuk mengetahui pengaruh bahan-bahan yang digunakan  dalam  formulasi  sabun  cair  terhadap bobot  jenis  yang  dihasilkan  [10].  Berdasarkan SNI,  standar  bobot  jenis  pada  sabun  cair  yaitu 1,01  –  1,1  g/ml.  Pengujian  bobot  jenis menggunakan piknometer, dari hasil pengamatan
diperoleh  bobot  jenis  dari  basis  sabun  adalah 0,9702  g/ml,  konsentrasi  10%  0.9355  g/ml, konsentrasi  20%  1,0661  g/ml,  konsentrasi  30% 1,0218  g/ml.  Penurunan  bobot  jenis  dapat dipengaruhi oleh suhu. Semakin meningkat suhu maka nilai bobot jenis akan menurun [17].

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167
(The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158

## Hasil Pengujian Aktivitas Antibakteri
Tabel 6. Hasil Pengujian Antibakteri
Diameter Zona Hambat (mm)
Formulasi sediaan Sabun Cair U1 U2 U3 U4 U5 Rata-Rata (1) (2) (3) (4) (5) (6) (7) Sabun Dettol (kontrol posiif) 16 13 17 18.5 15.5 16 Basis Sabun (kontrol negatif) 0 0 0 0 0 0 Sediaan Konsentrasi 10% 4.5 6.5 5 4.5 4 4.9 Sediaan Konsentrasi 20% 6.5 7 6 6 6 6.3 Sediaan Konsentrasi 30% 7.5 8 7.5 7 7.5 7.5 Pada Tabel 10 menunjukkan bahwa adanya perbedaan  daerah  hambat  yang  terbentuk  pada masing-masing perlakuan yang dilakukan sebanyak 5 kali ulangan. Rata- rata daerah hambat tersebut  menunjukkan  bahwa  adanya  perubahan yang  terjadi  terhadap  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus  aureus. Dari  hasil  pengujian, sediaan  sabun  dengan  konsentrasi  10%  didapat zona  hambat  4.9  mm,  konsentrasi  20%  didapat zona  hambat  6.3  mm,  dan  konsentrasi  30% didapat  zona  hambat  7.5  mm.  Hal  tersebut menunjukkan adanya aktivitas terhadap Staphylococcus aureus .
Sediaan  yang  memiliki  zona  hambat  yang terbesar adalah sediaan dengan konsentrasi 30%. Pada  penelitian  ini,  semakin  tinggi  konsentrasi ekstrak  maka  semakin  besar  zona  hambat  yang dihasilkan. Kontrol negatif yang digunakan yaitu basis sabun.
Basis  sabun  tidak  menunjukkan  adanya zona  hambat,  hal  ini  mengindikasikan  bahwa basis  sabun  tidak  memiliki  aktivitas  antibakteri. Kontrol positif yang digunakan adalah sabun cair dettol. Rata-rata zona hambat kontrol positif yang didapat yaitu 16 mm. Berdasarkan kategori daya hambat, sediaan sabun cair ekstrak daun pala pada konsentrasi 10% (4.9 mm) dikategorikan Lemah, konsentrasi 20% (6.3 mm) dikategorikan sedang, dan  konsentrasi  30%  (7.5  mm)  dikategorikan sedang [16].
Sediaan sabun cair ekstrak daun jarak tintir memiliki aktivitas sebagai antibakteri dikarenakan ekstrak daun jarak tintir mengandung  senyawa  alkaloid,  flavonoid,
saponin,  tanin  dan  fenol.  Alkaloid  memiliki aktivitas  antibakteri  melalui  mekanisme  dengan cara mengganggu komponen penyusun peptidoglikan  pada  sel  bakteri,  sehingga  lapisan dinding  sel  tidak  terbentuk  secara  utuh  dan menyebabkan  kematian  sel  tersebut.  Flavonoid juga  berfungsi  sebagai  antibakteri  dengan  cara membentuk  senyawa  kompleks  terhadap  protein ekstraseluler yang menggangu integritas membran sel bakteri [18].
Fenol  bekerja  dengan  cara  merusak dinding  sel  dan  merusak  enzim-enzim  pada bakteri  [18].  Polifenol  pada  kadar  tinggi  dapat menyebabkan koagulasi protein dan menyebabkan sel membran mengalami lisis [19]. Saponin digunakan sebagai antimikroba, Mekanisme  saponin  sebagai  antibakteri  adalah menurunkan  tegangan  permukaan  sehingga mengakibatkan senyawa intraseluler akan keluar. Saponin  termasuk  dalam  kelompok  antibakteri yang  menggangu  permeabilitas  membran  sel bakteri, yang mengakibatkan kerusakan membran sel  dan  menyebabkan  keluarnya  berbagai komponen  penting  dari  dalam  sel  baketri  yaitu protein,  asam  nukleat  dan  nukleotida.  Aktivitas tanin sebagai antibakteri dengan kemampuannya dalam  menginaktivasi  adhesi  sel  mikroba (molekul  yang  menempel  pada  sel  inang)  yang terdapat  pada  permukaan  sel  yang  akan menyebabkan  kerusakan  pada  dinding  sel, sehingga  membran  akan  bocor  (mengganggu permeabilitas)  dan  bakteri  akan  mengalami penghambatan pertumbuhan bahkan dapat mengalami kematian [2].

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167
(The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158

## Analisis Data
Data hasil pengujian antibakteri di analisis dengan  menggunakan  uji  statistik.  Sebelum dilakukan uji statistik, terlebih dulu dilakukan uji
homogenitas  dan  normalitas  untuk  mengetahui apakah  data  memiliki  varian  yang  sama.  Nilai signifikan yaitu p > 0.05.
Tabel 7. Uji Homogenitas Levene Statistic df1 df2 Sig. (1) (2) (3) (4) 2.653 3 16 .084
Dari tabel uji homogenitas yang bertujuan untuk  menguji  berlaku  tidaknya  asumsi  untuk ANOVA,  yaitu  apakah  keempat  perlakuan mempunyai  varians  yang  sama  (identik).  Dalam tabel terlihat bahwa Levene adalah 2,653 dengan nilai probabilitas 0,084. Oleh karena probabilitas
0,084 > 0,05 maka ke empat perlakuan memiliki varians  yang  sama.  Karena  varians  sama  maka Analisis  Varians  dilakukan  untuk  menguji  dan membuktikan apakah keempat perlakuan memiliki rataan yang sama. Tabel 8. Hasil Anova Sumber Keragaman Jumlah Kuadrat Derajat bebas Jumlah Kuadrat Tengah Nilai F hitung Nilai F tabel 5% (3,16) Sig. (1) (2) (3) (4) (5) (6) (7) Perlakuan 374.637 3 124.879 92.933*) 3.24 .000 Galat 21.500 16 1.344 Total 396.137 19
Dari tabel anova dapat dilihat perbandingan  F  hitung  dengan  F  tabel  dengan tingkat kepercayaan 95%, jika F hitung > F tabel, maka keempat rataan perlakuan untuk pengujian aktivitas antibakteri tidak  identik dan sebaliknya jika  nilai  F  hitung  <  F  tabel  keempat  rataan perlakuan adalah identik atau sama. Oleh karena nilai F hitung > F tabel  maka dapat disimpulkan rataan dari keempat perlakuan untuk aktivitas
sebagai  antibakteri  adalah  tidak  sama  atau berbeda. Setelah diketahui bahwa ada perbedaan yang  signifikan,  masalah  yang  akan  dibahas selanjutnya  adalah  menentukan  mana  saja kelompok  perlakuan  yang  berbeda  dan  mana yang  tidak  berbeda.  Masalah  ini  akan  dibahas pada analisis uji perbandingan dengan menggunakan Uji Tuckey HSD ( Honest Significance Difference ) berikut.

## Tabel 9. Test Tuckey HSD
Perlakuan N Subset for alpha = 1 0.05 2 3 (1) (2) (3) (4) (5) (6) Tukey HSD a Ekstrak 10% 5 4.9000 Ekstrak 20% 5 6.3000 6.3000 Ekstrak 30% 5 7.5000 Kontrol(+) 5 16.0000 Sig. .263 .387 1.000 Pada tabel  13,  dapat dilihat  pada subset 1
terlihat hanya  grup dengan  anggota kelompok
ekstrak daun jarak tintir 10% dan 20% saja. Dengan kata lain dapat dikatakan bahwa ekstrak

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167 (The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158
daun  jarak tintir  10%  berbeda  signifikan  dengan ekstrak  daun  jarak  tintir  30%  dan  kontrol  (+). Pada  subset  2  terlihat  hanya  grup  Ekstrak  20% dan  30%,  dengan  kata  lain  Ektrak  30%  berbeda signifikan  dengan  ekstrak  daun  jarak  tintir  10% dan kontrol (+).  Pada subset 3 terlihat hanya grup Kontrol (+).

## KESIMPULAN
Sediaan  sabun  cair  ekstrak  daun  jarak  tintir dengan  konsentrasi  20%  dan  30%  dalam  uji organoleptik, uji pH, uji tinggi busa, dan uji bobot jenis  telah  memenuhi  persyaratan  sesuai  dengan standar  yang  ditetapkan  SNI  06-4085-1996. Sedangkan pada konsentrasi 10% dalam uji bobot jenis tidak memenuhi persyaratan. Sediaan sabun cair  ekstrak  daun  jarak  tintir  memiliki  aktivitas antibakteri  terhadap  bakteri Staphylococcus aureus yaitu pada konsentrasi 10% zona hambat 4.9  mm,  konsentrasi  20%  zona  hambat  6.3  mm, dan konsentrasi 30% zona hambat 7.5 mm.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] Arwinda  Gusviputri.,  Njoo  Meliana  P.  S., Aylianawati., Nani Indrawasti. 2013. Pembuatan  Sabun  Dengan  Lidah  Buaya ( Aloe  Vera) Sebagai  Antiseptik  Alami. Widya Teknik. 12(1): 11-21.
[2] Chairani A, dan Harfiani E. 2018. Efektivitas Getah  Jarak  Sebagai  Antiseptik  terhadap Pertumbuhan Staphylococcus aureus, Escherichia  colidan  Candida  sp. secara  In Vitro. Jakarta. JK Unila Volume 2(2): 84-92.
[3] Mabrouk, S. T. 2005. Making Usable Quality and Transparant Soap, Journal of  Chemical Education. 82(10).
[4] Yullia  S,  Husul  W,  Verranda  A.  2016. Formulasi sabun mandi padat ekstrak etanol umbi  bawang  tiwai  ( Eleuthirine  bulbosa (Mill.)  Urb.).  Akademi  farmasi,  samarinda. Media Farmasi. 13(1): 14-22.
[5] Subhankari  PC,  Santanu  KM,  Somenath  R. 2012. Biochemical Characters And
Antibiotic Susceptibility Of S.aureus Isolates. Asian  Pacific  Journal  of  Tropical Biomedicine . 1(3): 212-216
[6] Maryani,  C.  2013.  Uji  aktivitas  antibakteri
ekstrak  jarak  tintir  ( jatropha  multifida  L. ). Program  Studi  Biologi,  Fakultas  Keguruan dan  Ilmu  Pendidikan,  Universitas  Sanata Dharma. hal 39
[7] Hutapea.  (2000): Inventaris  Tanaman  Obat Indonesia ,  Departement  Kesehatan  RI  dan
Badan Penelitian dan Pengembangan
Kesehatan, Jakarta. [8] Dewi. 2015. Perbedaan Efek Perawatan Luka
Dengan Menggunakan Getah Pohon Yodium ( jatropha multifidi L. ) dan Povidon Iodin 10% Dalam Mempercepat
Penyembuhan  Luka  Bersih  Pada  Marmut (Cavia  Porcellus).  Jurnal  Wiyata.  1(2):  80- 86.
[9] Paulina  V.Y.Yamlean,  dan  Widdi  Bodhi. 2017.  Formulasi  Dan  Uji  Antibakteri Sediaan Sabun Cair Ekstrak Daun Kemangi (Ocymun  basilicum L.)  Terhadap  Bakteri Staphylococcus  aureus .  Pharmachon  Jurnal Ilmiah Farmasi Unsrat. 6(1): 76-86.
[10] Stefanie  Amelia  Dimpudus,  Paulina  V.  Y, Yamlean,  Adithya  Yudistira.  Formulasi Sediaan  Sabun  Cair  Antiseptik  Ekstrak Etanol Bunga Pacar Air ( Impatiens balsamina  L) Dan  Uji  Efektivitasnya Terhadap  Bakteri Staphylococcus  aureus Secara  In  Vitro.  Pharmacon  Jurnal  Ilmiah Farmasi- Unsrat. 6(3): 208-215.
[11] Niswah  Lukluatun.  2014.Uji  Aktivitas Antibakteri Ekstrak Buah Parijoto
( Medinilla  speciose Blume)  menggunakan Metode  Difusi  Cakram.  Skripsi.  Jakarta: UIN Syarif Hidayatullah
[12] Titaley,  S.,  Fatimawali,  Lolo,  W.  2014. Formulasi  dan  Uji  Efektivitas  Sediaan  Gel Ekstrak  Etanol  Daun  Mangrove  Api-Api (Aviceniia marina) Sebagai Antieptik
Tangan. Skripsi. FMIPA UNSRAT, Manado.
[13] Zaraswati  D  dan  E  Johannes.  2012.  Uji efektivitas  ekstrak  kasar  alga  merah Eucheuma  cottonii sebagai  antibakteri terhadap bakteri pathogen. Jurusan Biologi. Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Hasanuddin, Makassar. 1- 7

## Biofarmasetikal Tropis
e - ISSN 2685-3167
(The Tropical Journal of Biopharmaceutical) 2020, 3 (1), 148-158
[14] Morse, A. S., Butel, J. S., Brooks, G. F. 2005. Mikrobiologi kedokteran. Penerbit Salemba Medika.
[15] Warbung,  Y.Y.,  Vonny,  N.  S.  W.,  dan Jimmy.  2014.  Daya  Hambat  Ekstrak  Spons Laut Pada Sapi Perah. Repository. Fakultas Peternakan Universitas Brawijaya. Malang.
[16] Davis  WW  &  Stout  TR.  2009.  Disc  Plate
Method  of  Microbiological  Antibiotic
Assay. Applied and Enviromental
Microbiology . 22(4): 666-670.
[17] Endang W dan Riris O. 2012. Identified Of Indicator  And  Material  For  Product  Shelf Life  Recorder  Smart  Label.  Departemen Teknologi  Industri  Pertanian,  Fakultas
Teknologi  Pertanian,  Institut  Pertanian Bogor. Hal 1-12
[18] Mhaske  M,  Samad,  B.N,  Jawade  R  and Bhansali,  A.  2012.  Chemical  Agents  in Control  of  Dental  Plaque  in  Dentistry:  An Overview of Current Knowledge and Future Challenges, Pelagia Research Library. 3(1): 268-272.
[19] Nainggolan,  Natalia  Rodessy.  2018.  Uji Aktivitas  Antibakteri  Dari  Ekstrak  Etanol Daun  Yodium  (Jatropha  multifida  L.) Terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus epidermidis dan Pseudomonas  aeruginosa  Secara In  Vitro . Univesitas Sumatera Utara. hal: 6