PEMANFAATAN METABOLIT JAMUR LAUT Nodulisporium sp . KT29 UNTUK MENINGKATKAN KINERJA PRODUKSI BUDIDAYA UDANG VANAME DI LAUT
UTILIZATION OF MARINE FUNGAL Nodulisporium sp . KT29 METABOLITES TO IMPROVE THE PRODUCTION PERFORMANCE OF MARINE CULTURE OF WHITE SHRIMP
Fazril Saputra 1 , Dinamella Wahjuningrum 2* , Kustiariyah Tarman 3 , dan Irzal Effendi 2 1 Mahasiswa Pascasarjana IPB
2 Departemen Budidaya Perairan, FPIK, IPB *E-mail: dinamella@yahoo.com
3 Departemen Teknologi Hasil Perairan, FPIK, IPB

## ABSTRACT
This  study  aimed  to  determine  the  best  dose  of  administration  of  marine  fungal  Nodulisporium sp. KT29  metabolites  to  improve  the  production  performance  of  marine  culture  of  white  shrimp.  The experimental  animals  used  were  white  shrimp  Litopenaeus  vannamei  post  larvae  12,  which  were reared in the sea using floating net cages with a stocking density of 700 post larvae/net. Experimental design  used  was  a  completely  randomized  design  consisting  of  3  treatments  with  3  replications; control without the administration of Nodulisporium sp . KT29 metabolites, dietary of feed containing Nodulisporium sp. KT29 metabolites at doses of 20 mL/kg of feed and 40 mL/kg of feed. The results showed that survival rate, absolute length growth, weight gain, daily growth rate and feed conversion ratio in treatment groups were better than the control (P<0.05). The administration of marine fungal Nodulisporium  sp.  KT29  metabolites  at  a  dose  of  20  mL/kg  of  feed  could  improve  the  production performance  of  white  shrimp  cultivated  in  the  sea  with  survival  rate,  daily  growth  rate  and  feed conversion ratio: 66.61 ± 6.94%, 20.18 ± 0.39 %/day and 3.20 ± 0.22, respectively.
Keywords : Nodulisporium sp. , Litopenaeus vannamei, marine culture, production performance

## ABSTRAK
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  menetukan  dosis  terbaik  dari  pemberian  metabolit  jamur laut Nodulisporium sp . KT29  untuk  meningkatkan  kinerja  produksi  budidaya  udang  vaname  di  laut. Hewan uji yang digunakan adalah udang vaname Litopenaeus vannamei post larva 12, yang dipelihara di  laut  menggunakan  keramba  jaring  apung  dengan  padat  tebar  700  ekor/hapa.  Desain  eksperimen yang  digunakan  adalah  rancangan  acak  lengkap  yang  terdiri  dari  3  perlakuan  dengan  3  ulangan; kontrol  tanpa  pemberian  metabolit Nodulisporium sp . KT29,  pemberian  pakan  yang  mengandung metabolit Nodulisporium sp.  KT29  dengan  dosis  20  mL/kg  pakan  dan  40  mL/kg  pakan.  Hasil penelitian menunjukkan bahwa kelangsungan hidup, pertumbuhan panjang mutlak, pertambahan berat, laju petumbuhan harian dan rasio konversi pakan pada perlakuan lebih baik daripada kontrol (P<0,05). Pemberian  metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29  pada  dosis  20  mL/kg  pakan  dapat meningkatkan  kinerja  produksi  udang  vaname  yang  dibudidayakan  di  laut  dengan  kelangsungan hidup, laju pertumbuhan harian dan rasio konversi pakan: 66,61 ± 6,94%, 20,18 ± 0,39%/hari dan 3,20 ± 0,22.
Kata kunci : Nodulisporium sp . KT29, Litopenaeus vannamei , budidaya laut, kinerja produksi

## I. PENDAHULUAN
Udang vaname Litopenaeus vannamei merupakan  udang  hasil  introduksi  yang  ber- asal dari Hawai, Amerika. Udang ini merupa-
kan  salah  satu  komoditas  unggulan  dalam sektor  perikanan  budidaya  di  Indonesia. Udang  vaname  biasanya  dibudidayakan  di tambak  air  payau  dan  di  laut  dengan  meng- gunakan keramba jaring apung (KJA).
Budidaya  udang  pada  sistem karamba jaring  apung  (KJA)  memiliki  beberapa  ke- untungan  bila  dibandingkan  dengan  budidaya udang  di  tambak,  yaitu:  relatif  tidak  terjadi penumpukan  limbah  organik  dari  sisa  pakan, rasio konversi pakan lebih baik karena tersedia- nya pakan alami  yang cukup dalam  memenuhi kebutuhan nutrien udang, serta tidak memerlu- kan  energi  untuk  pergantian  air  dan  aerasi (Zarain-Herzberg et  al. ,  2010). Namun,  budi- daya  udang  vaname  di  laut  menggunakan KJA  memiliki  beberapa  kendala  seperti  sifat air laut yang dinamis dan sangat  dipengaruhi oleh  faktor  lingkungan  seperti  gelombang, arus,  kecerahan,  dan  pasang  surut  (Azis, 2006). Budidaya di KJA merupakan kegiatan budidaya  di  lingkungan  terbuka  seperti  di laut, dimana rawan terganggu oleh perubahan kondisi  lingkungan  dan  organisme  predator yang dapat menyebabkan terjadinya penyakit akibat  stres  fisiologis  pada  organisme  yang dibudidayakan  (Beveridge,  1984;  Swann et al. , 1994).  Terjadinya  stres pada udang akan mengakibatkan peningkatan untuk pengguna- an  energi  untuk  sistem  pertahanan  tubuh yang  selanjutnya  akan  menyebabkan  penu- runan  kinerja  produksi  udang,  seperti  penu- runan  pertumbuhan  dan  pemanfaatan  pakan (Peterson and Walke, 2001).
Salah  satu  alternatif  yang  dapat  dila- kukan  untuk  meningkatkan  kinerja  produksi adalah  melalui  penggunaan  bahan  alami. Penggunaan  bahan  alami  memiliki  keuntu- ngan  yaitu  aman  dan  ramah  lingkungan.  Sa- lah  satu  bahan  alami  yang  dapat  digunakan adalah  jamur  laut  yang  umumnya  mengan- dung  senyawa  β-glukan  yang  merupakan suatu  substansi  yang  dapat  mengubah  struk- tur  permukaan  usus  menjadi  lebih  luas,  se- hingga penyerapan nutrisi pada udang menja- di  lebih  baik  (Hai et  al .,  2009). Nodulis- porium sp. KT29 merupakan jamur laut yang diisolasi  dari  alga  merah  (Tarman et  al. , 2011a). Jamur laut ini juga memiliki senyawa antibakterial yang dapat menghambat bakteri patogen  pada  ikan  seperti Vibrio  anguilla- rum , Aeromonas  salmonicida ,  dan Yersinia ruckeri (Tarman et  al. ,  2011b).  Menurut Achmadi  (2015),  pemanfaatan  jamur  laut
sebagai  fermentor  pakan  dapat  mening- katkan kinerja pertumbuhan dan produksi sel darah  merah  ikan  lele Clarias sp. Pemanfaa- tan  metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp. KT29  khususnya  untuk  budidaya  udang vaname  hingga  kini  belum  dikaji  secara  il- miah.  Oleh  karena  itu,  penelitian  ini  dilaku- kan  dengan  tujuan  untuk  menentukan  dosis terbaik  dari  pemberian  metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp . KT29  untuk  mening- katkan  kinerja  produksi  udang  vaname  yang dibudidayakan di laut.

## II. METODE PENELITIAN

## 2.1. Waktu dan Tempat
Penelitian  ini  dilaksanakan  selama dua  bulan  dari  bulan  Mei-Juni  2015.  Peneli- tian ini dilakukan di KJA Balai Sea Farming , Pusat Kajian Sumberdaya Pesisir dan Lautan (PKSPL),  Lembaga  Penelitian  dan  Pengab- dian  Kepada  Masyarakat  (LPPM),  Institut Pertanian  Bogor  (IPB),  Pulau  Semak  Daun, Kepulauan Seribu.

## 2.2. Materi Uji
Isolat jamur laut yang digunakan pada penelitian  ini  adalah Nodulisporium sp. KT29 yang diperoleh dari koleksi jamur laut yang  terdapat  di  Laboratorium  Mikrobiologi Hasil  Perairan,  Departemen  Teknologi  Hasil Perairan  (THP),  FPIK,  IPB.  Jamur  ini  di- isolasi dari alga merah Eucheuma edule yang berasal  dari  Takalar,  Sulawesi  Selatan (Tarman, 2011).
Udang  yang  digunakan  pada  peneli- tian  ini  adalah  udang  vaname  ( L.  vannamei ) stadia PL-12  yang  berasal  dari hatchery di Anyer,  Jawa  Barat.  Udang  vaname  dibudi- dayakan  di  laut  dengan  sistem  pendederan. Sistem  pendederan  berfungsi  untuk  meng- adaptasikan  benih  udang  vaname  dengan kondisi  di  laut  untuk  kemudian  dilanjutkan dengan upaya pembesaran.

## 2.3. Prosedur Penelitian
Penyiapan  metabolit  pada  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29  dan  pembuatan
pakan  perlakuan  dilakukan  sebelum  peme- liharaan  udang  vaname  di  KJA.  Pemberian pakan  perlakuan  dilakukan  selama  21  hari masa pemeliharaan di KJA.

## 2.3.1. Penyiapan  Metabolit  Jamur  Laut
Nodulisporium sp. KT29 Penyiapan  metabolit  pada  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29  mengacu  pada metode  penelitian  Tarman et  al. (2011b). Peremajaan  jamur  laut Nodulisporium sp. KT29 dilakukan pada media Potato Dextrose Agar (PDA)  selama  tujuh  hari.  Hasil  pe- remajaan  pada  media  PDA  ini  kemudian dipotong  kecil  dengan  bentuk  kubus  untuk dikultur  di  labu  Erlenmeyer  250  mL  yang telah  diisi  dengan  media Potato  Dextrose Broth (PDB)  sebanyak  100  mL.  Selanjutnya media  ini  didiamkan  selama  satu  hari.  Pada hari  berikutnya,  media  ini  dikocok  meng- gunakan shaker selama  tujuh  hari.  Setelah itu,  sebanyak  12,5  mL  hasil  kultur Noduli- sporium sp.  KT29  sebelumnya  diambil  dan dipindahkan  pada  labu  Erlenmeyer  500  mL yang telah diisi dengan media PDB sebanyak 250  mL,  dan  selanjutnya  dikultur  selama  14 hari.  Hasil  kultur  ini  dipanen  dan  bagian yang  dipergunakan  penelitian  ini  adalah metabolit  dari  jamur  laut Nodulisporium sp. KT29.  Metabolit  merupakan  hasil  dari metabolisme  yang  mengandung  bahan  aktif. Bahan aktif metabolit terkandung pada media pemeliharaan.  Metabolit  pada  media  peme- liharaan tersebut kemudian dievaporasi untuk memisahkan  air  yang  ada  di  dalamnya dengan persentase sebanyak 80%. Hasil eva- porasi  ini  yang  kemudian  ditambahkan  pada pakan  perlakuan.  Metabolit  pada  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29  dianalisis  kan- dungan  bahan  aktifnya,  yaitu  analisis  kadar β-glukan dengan menggunakan metode spek- trofotometer dengan panjang gelombang 400 nm  (Kusmiati et  al. ,  2007)  dan  analisis fitokimia  menggunakan  metode high  perfor- mance  liquid  chromatography (HPLC)  de- ngan  hasil  yaitu:  kadar  β-glukan  sebanyak 0,54%  dan  kandungan  fitokimia  yaitu  fitos-
terol  sebanyak  121  ppm,  saponin  sebanyak 23 ppm dan polifenol sebanyak 31 ppm

## 2.3.2. Pembuatan Pakan Perlakuan
Pakan uji  yang digunakan pada pene- litian  ini  ada  dua,  yaitu  pakan  kontrol  dan pakan  perlakuan.  Pakan  kontrol  merupakan pakan  komersil  dengan  kandungan  protein 35,97% yang biasa digunakan pada budidaya udang.  Pembuatan  pakan  kontrol  dilakukan dengan  cara  menghaluskan  dan  menambah- kan vitamin C sebanyak 0,1% serta carboxyl methyl  cellulose (CMC)  sebagai  perekat sebanyak 30 gram/kg pakan, kemudian pakan dicetak  kembali.  Sementara  itu,  pakan  per- lakuan  merupakan  pakan  komersil  yang dicetak  kembali  dan  mendapat  tambahan vitamin  C  sebanyak  0,1  %, carboxyl  methyl cellulose (CMC)  sebagai  perekat  sebanyak 30  gram/kg  pakan  serta  ditambahkan  meta- bolit  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29. Pakan  yang  sudah  dicetak  kembali  dikering- kan dengan oven pada suhu 35°C  selama 24 jam.  Pembuatan  pakan  dilakukan  sekaligus sebelum penelitian di mulai, kemudian pakan disimpan di dalam wadah yang tertutup rapat sebelum  diberikan  pada  udang  yang  dipeli- hara di KJA.
Dosis  metabolit  jamur  laut Noduli- sporium sp.  KT29  yang  digunakan  pada pakan perlakuan yaitu dosis 20 mL/kg pakan (P1)  dan  40  mL/kg  pakan  (P2).  Dosis  ini merupakan dosis terbaik dari hasil uji in vitro yang  sebelumnya  telah  dilakukan.  Pakan perlakuan  yang  telah  dicetak  kemudian dihaluskan  menjadi crumble (remah)  untuk menyesuaikan  ukuran  pakan  dengan  stadia (PL-12) dan bukaan mulut udang vaname.

## 2.3.3. Pemeliharaan Udang di KJA
Desain  eksperimen  yang  digunakan pada  penelitian  ini  adalah  rancangan  acak lengkap (RAL)  yang terdiri dari 3 perlakuan masing-masing  dengan  3  ulangan  yaitu  kon- trol  (K)  tanpa  penambahan  metabolit  jamur laut Nodulisporium sp.  KT29,  pemberian pakan  perlakuan  dengan  penambahan  meta- bolit  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29
sebanyak 20  mL/kg  pakan  (P1)  dan  40 mL/kg pakan (P2).
Pemberian pakan dengan feeding rate 50-35%  dilakukan  untuk  memaksimalkan pemberian pakan sesuai dengan nafsu makan udang  uji  dikarenakan  lokasi  penelitian dipengaruhi  oleh  kondisi  lingkungan  yang berubah-ubah,  seperti  angin  yang  kencang, ombak  yang  tinggi  dan  arus  yang  kuat  yang juga  mempengaruhi  nafsu  makan  udang. Pakan juga  diberikan  dengan feeding frequency sebanyak  tiga  kali  sehari  yaitu pagi,  siang,  dan  sore  hari.  Selama  pemeliha- raan  udang  berlangsung  dilakukan  pengu- kuran parameter kualitas air yang dipertahan- kan  pada  kisaran  optimum  untuk  kehidupan udang vaname yaitu: suhu pada 28,1-29,3°C, pH  pada  8,5,  oksigen  terlarut  pada  7,8-11,3 ppm, dan salinitas pada 33-35 ppt.

## 2.4. Parameter Penelitian
Parameter  penelitian  yang  diamati pada  penelitian  ini  meliputi  kelangsungan hidup  (KH),  pertumbuhan  panjang  mutlak (PPM),  pertambahan  bobot  (PB),  laju  per- tumbuhan  harian  (LPH)  dan  rasio  konversi pakan (RKP) dengan persamaan:
...............................  (1)
dimana:  KH=  kelangsungan  hidup (%), Nt= jumlah  udang  pada  akhir  perlakuan  (ekor), No=  jumlah  udang  pada  awal  perlakuan (ekor).
PPM (cm) = Pt – Po  ...............................  (2)
dimana: PPM= Pertumbuhan panjang mutlak (cm),  Pt=  Panjang  rata-rata  pada  akhir perlakuan  (cm),  Po=  Panjang  rata-rata  pada awal perlakuan (cm).
PB (gram) = Bt – Bo  ..............................  (3)
dimana:  PB=  Pertambahan  bobot  (g),  Bt= Berat  udang  pada  akhir  penelitian  (g)  Bo= bobot udang pada awal penelitian (g).
.........   (4)
(Bai e t al., 2010).
dimana:  LPH=  laju  pertumbuhan  harian (%/hari),  Bt=  bobot  rata-rata  udang  pada akhir  penelitian  (g),  Bo=  bobot  rata-rata udang  pada  awal  penelitian  (g),  t=  periode pemeliharaan (hari).
..........................  (5)
(Nejad et al. , 2006).
dimana: RKP= rasio konversi pakan, F=jum- lah  pakan  (gram),  Bt=  biomassa  udang  pada saat  akhir  perlakuan  (gram),  Bm=  biomassa udang yang mati saat perlakuan (gram), Bo = biomassa  udang  pada  saat  awal  perlakuan (gram).

## 2.5. Analisis data
Data  yang  didapat  ditabulasi  dengan program  MS.  Office  Excel  2010  dan  untuk uji  ANOVA  dianalisis  menggunakan  pro- gram  SPSS  16.0  dengan  selang  kepercayaan 95%.  Perlakuan  yang  berbeda  nyata  akan diuji lanjut dengan uji Duncan untuk menge- tahui  perlakuan  terbaik.  Parameter  kinerja produksi (kelangsungan hidup (KH), pertum- buhan  panjang  mutlak  (PPM),  pertambahan berat  (PB),laju  pertumbuhan  harian  (LPH) dan  rasio  konversi  pakan  (LPH))  disajikan dalam bentuk grafik.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1. Hasil
Data  kelangsungan  hidup  (KH)  pada Gambar  1  menunjukkan  bahwa  perlakuan pemberian  metabolit Nodulisporium sp. KT29 menghasilkan nilai KH yang lebih baik (P<0,05)  dibanding  kontrol  (55,88±1,41%) dengan  nilai  KH  pada  perlakuan  P1  dan  P2 masing-masing yaitu 66,61±6,94% dan 63,61 ±1,90%. Pemberian metabolit Nodulisporium
sp.  KT29  pada  udang  vaname  yang  dibudi- dayakan  di  laut  menggunakan  KJA  juga berpengaruh  positif  terhadap  pertambahan panjang  mutlak  (PPM)  yang  berbeda  nyata (P<0,05)  dengan  kontrol  (3,08±0,20  cm), tetapi  tidak  terdapat  perbedaan  yang  nyata (P<0.05)  antara  perlakuan  P1  dan  P2 (4,13±0,20 cm; 3,9±0,1 cm) (Gambar 2). Hal yang  sama  juga  terjadi  pada  pertambahan bobot  (PB)  udang  vaname,  nilai  PB  per- lakuan P1 dan P2 (0,67±0,03 g; 0,66±0,05 g) lebih  baik  (P<0,05)  dibanding  kontrol  (0,35 ±0,01  g)  (Gambar  3).  Nilai  PPM  dan  PB yang  lebih  baik  pada  perlakuan  pemberian metabolit Nodulisporium sp.  KT29  selanjut- nya  mempengaruhi  parameter  kinerja  per- tumbuhan  lainnya,  yakni  laju  pertumbuhan harian  (LPH)  dan  rasio  konversi  pakan (RKP).  Laju  pertumbuhan  harian  (LPH) untuk  perlakuan  pemberian  pada  metabolit Nodulisporium sp.  KT29  (P1  dan  P2)  lebih baik (P<0,05) dibanding kontrol (16,51±0,47 %/ hari) dengan nilai LPH pada perlakuan P1 dan  P2  masing-masing,  yaitu  20,18±0,39 %/hari  dan  20,14±0,53  %/hari  (Gambar  4). Rasio  konversi  pakan  (RKP)  pada  perlakuan P1 dan P2 (3,20±0.22; 3,23±0,30) juga  lebih baik  (P<0,05)  dibanding  kontrol  (6,27±0,58) (Gambar 5).
Gambar 1.  Kelangsungan  hidup (KH) udang vaname  yang  diberi  perlakuan pakan  mengandung  metabolit  ja- mur  laut Nodulisporium sp. KT29 selama 21 hari.
Gambar 2.  Pertambahan panjang mutlak (PPM) udang vaname yang diberi perlakuan  pakan  mengandung metabolit  jamur  laut Nodulis- porium sp. KT29 selama 21 hari.
Gambar 3.  Pertambahan  bobot  (PB)  udang vaname  yang  diberi  perlakuan pakan  mengandung  metabolit jamur laut Nodulisporium sp.  KT 29 selama 21 hari.
Gambar 4.  Laju  pertumbuhan  harian  (LPH) udang  vaname  yang  diberi  per- lakuan  pakan  mengandung  meta- bolit  jamur  laut Nodulisporium sp. KT29 selama 21 hari.
Gambar 5.  Rasio  konversi  pakan  (RKP) udang  vaname  yang  diberi  per- lakuan  pakan    mengandung  me- tabolit  jamur  laut Nodulisporium sp. KT29 selama 21 hari.

## 3.2. Pembahasan
Pemberian  metabolit  jamur  laut No- dulisporium sp.  KT29  terbukti  memberikan pengaruh  positif  terhadap  kelangsungan hidup  (KH)  udang  vaname  yang  dibudidya- kan di laut menggunakan KJA. Hal ini ditun- jukkan  melalui  nilai  KH  pada  perlakuan pemberian  metabolit  jamur  laut Noduli- sporium sp.  KT29  yang  lebih  tinggi  di- banding kontrol.
Nodulisporium sp.  KT29  merupakan jamur  endofit  yang  hidup  menempel  pada suatu  inang.  Endofit  merupakan  mikroorga- nisme  (bakteri,  jamur,  dan actinomycetes ) yang  hidup  di  dalam  jaringan  inang  yang berupa  tanaman  tanpa  menyebabkan  gejala sakit  (Vanessa  and  Christopher,  2004).
Keberadaan  jamur  endofit  diketahui mampu  meningkatkan  resistensi  inangnya terhadap  stres  biotik  dan  abiotik  melalui produksi  komponen  bioaktif  (Nejad  and Johnson,  2000;  Cavaglieri et  al. ,  2004). Selain itu, jamur endofit juga diketahui mem- produksi  komponen  bioaktif  yang  mem- punyai aktivitas antimikroba dan antioksidan (Gunatilaka,  2006;  Jia et  al. ,  2016).  Kom- ponen-komponen  bioaktif tersebut umumnya juga  terkandung  dalam  metabolit  jamur endofit.  Berdasarkan  hasil  analisis  kan- dungan  komponen  bioaktif  dalam  metabolit
jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29,  diketa- hui  bahwa  di  dalam  metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29  terkandung  β- glukan,  fitosterol,  saponin,  dan  polifenol. Menurut  Meena et  al. (2012),  β-glukan  ber- tindak  sebagai  imunostimulan,  yang  dapat meningkatkan  kekebalan  tubuh  udang  vana- me  sebagai  proteksi  pada  udang  vaname untuk  menghadapi  stres  fisiologis  akibat perubahan  kondisi  lingkungan  selama  peme- liharaan  di  laut.  Selain  itu,  β-glukan  juga mampu  meningkatkan  sistem  imun  non- spesifik  melalui  peningkatan  aktivitas  liso- zim  dan  komplemen  (Paulsen et  al. ,  2001; Falco et  al. ,  2012;  Pionnier et  al. ,  2013; Pionnier et  al. , 2014;  Kühlwein et  al. , 2014;
Dawood et al. , 2015a).
Toleransi  terhadap  stres  juga  dise- babkan  karena  adanya  konsumsi  pakan, energi,  dan  masuknya  nutrien  dalam  jumlah yang  lebih  tinggi  akibat  pemberian  pakan yang  mengandung  β-glukan.  Hal  ini  menye- babkan  peningkatan  sintesis  adrenal  steroid yang  berperan  untuk  menghadapi  stres. Selain  itu,  aktivitas  antimikroba  yang  di- induksi  oleh  saponin  juga  dapat  melindungi suatu  organisme  terhadap  infeksi  patogen (Suciati et al. , 2012).
Proteksi  terhadap  udang  vaname diduga  juga  disebabkan  akibat  adanya  kan- dungan  fitosterol  pada  metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp. KT29. Fitosterol diketahui sebagai  salah  satu  komponen  yang  dapat berperan  sebgai  imonomodulator  yang  ber- tindak  untuk  memodulasi  sistem  imun (Greiner et al. , 2001).
Pertumbuhan  yang  lebih  baik  pada perlakuan  pemberian  metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp.  KT29  diduga  disebabkan karena adanya kandungan β-glukan. Menurut Hai et  al .  (2009)  pemberian  β-glukan  pada udang  menyebabkan  struktur  permukaan usus menjadi lebih luas, sehingga penyerapan nutrien  menjadi  lebih  baik.  Adanya  perbai- kan  dari  pencernaan  dan  penyerapan  nutrien akan  menyebabkan  efisiensi  pakan  dan  pe- nyerapan  protein  menjadi  lebih  baik  yang selanjutnya  akan  menghasilkan  kinerja  per-
tumbuhan  yang  lebih  baik  (Dawood et  al. , 2015b).
Hal  ini  terjadi  karena  β-glukan  yang masuk  ke  dalam  kelenjar  pencernaan  akan terdegradasi  oleh  glukanase  untuk  produksi energi  yang  menyebabkan  penggunaan  pro- tein  yang  lebih  banyak  untuk  pemanfaatan pakan dan pertumbuhan (López et al. , 2003). Pemberian  metabolit  jamur  laut Nodulis- porium sp.  KT29  juga  berpengaruh  positif terhadap  rasio  konversi  pakan  (RKP)  udang vaname  yang  dibudidayakan  di  laut  meng- gunakan KJA.
Hal  ini  diduga  karena  kandungan fitokimia  dari  metabolit  jamur  laut Noduli- sporium sp.KT29 yaitu fitosterol dan saponin yang  membuat  pakan  menjadi  lebih  efisien. Menurut  Couto et  al. (2014),  pemberian fitosterol  dan  saponin  baik  terpisah  maupun bersama-sama pada juvenil ikan gilthead sea bream ( Sparus  aurata )  dapat  meningkatkan pemanfaatan pakan. Diduga pemberian fitos- terol  dan  saponin  pada  jumlah  yang  cukup dapat mempengaruhi usus atau pyloric caeca . Pemberian  suatu  bahan  aktif,  terutama yang berfungsi sebagai imunostimulan, harus diberikan  pada  dosis  yang  optimum,  karena pemberian  imunostimulan  pada  dosis  yang terlalu  tinggi  diduga  tidak  akan  meningkat- kan respon imun.
Dosis  imunostimulan  yang  terlalu tinggi  akan  menghambat  respon  imun  dan menurunkan  efikasinya  (Sakai,  1999).  Pada penelitian  ini,  pemberian  metabolit  jamur laut Nodulisporium sp.  KT 29 pada dosis 20 mL/kg  pakan  menunjukkan  hasil  yang  tidak berbeda  nyata  pada  kelangsungan  hidup  dan parameter pertumbuhan udang vaname dibanding dosis 40 mL/kg pakan.
Hal  ini  menunjukkan  bahwa  dosis  20 mL/kg pakan merupakan dosis optimum dari metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp. KT29  yang  dapat  diberikan  pada  udang vaname.

## IV. KESIMPULAN
Pemberian  pakan  yang  mengandung metabolit  jamur  laut Nodulisporium sp.
KT29  dengan  dosis  20  mL/kg  pakan  selama 21  hari  mampu  meningkatkan  kinerja  pro- duksi  udang  vaname  PL-12  yang  dipelihara di laut.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Kami  mengucapkan  terimakasih  ke- pada  Proyek  Penelitian  Unggulan  Perguruan Tinggi,  dalam  rangka  pelaksanaan  kegiatan Penelitian  Strategis  Unggulan,  tahun  ang- garan  2015,  No.  Kontrak  083/SP2H/PL/Dit. Litabmas/II/2015  yang telah  mendanai pene- litian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Achmadi,  F.F.  Kinerja  pertumbuhan  dan gambaran  darah  ikan  lele  ( Clarias sp.) yang diberi pakan yang difermentasi  kapang  laut  EN.  2015.
Skripsi. Departemen Budidaya
Perairan.  Institut  pertanian  Bogor.
13hlm.
Azis,  M.F.  2006.  Gerak  air  di  laut. Oseana , 31(4):9-21.
Bai, N.,W. Zhang, K. Mai, X. Wang, W. Xu, and  H.  Ma.  2010.  Effects  of discontinuous  administration  of  β- glucan and glycyrrhizin on the growth and  immunity  of  white  shrimp Litopenaeus  vannamei . Aquaculture,
306:218–224.
Beveridge,  M.C.M.  1984. Cage and pen  fish farming carrying capacity models and environmental  impact. FAO  Fisheries Technical  Paper  255.  FAO.  Roma. 131p.
Cavaglieri, L., A. Passone, and M. Etcheverry.  2004.  Correlation  bet- ween  screening  procedures  to  select root endophytes for biological control of Fusarium  verticillioides in Zea mays L. Biol. Control , 31: 259-267. Couto,  A.,  T.M.  Kortner,  M.  Penn,  A.M. Bakke,  A.  Krogdahl,  and  A.  Oliva- Teles.  2014.  Effects  of  dietary phytosterols  and  soy  saponins  on
growth, feed utilisation efficiency and intestinal  integrity  of  gilthead  sea bream  ( Sparus  aurata )  juveniles .
Animal  Feed  Science  and  Techno- logy , 198:203-214.
Dawood,  M.A.O.,  S.  Koshio,  M.  Ishikawa, and  S.  Yokoyama.  2015a.  Interaction effects  of  dietary  supplementation  of heat-killed Lactobacillus  plantarum and β-glucan on growth performance, digestibility  and  immune  response  of juvenile red sea bream, Pagrus major . Fish Shellfish Immunol. , 45: 33–42. Dawood, M.A.O., S. Koshio, M. Ishikawa, S.
Yokoyama,  M.F.  El  Basuini,  M.S. Hossain,  T.H.  Nhu,  A.S.  Moss,  S. Dossou,  and  H.  Wei.  2015b.  Dietary supplementation  of  β-glucan  impro- vees  growth  performance,  the  innate immune response and  stres  resistance of  red  sea  bream, Pagrus  major .
Aquaculture Nutrition , 2015:10.1111/ anu.12376.
Falco,  A.,  P.  Frost,  J.  Miest,  N.  Pionnier,  I.
Irnazarow,  and  D.  Hoole.  2012. Reduced  inflammatory  response  to Aeromonas  salmonicida infection  in common  carp  ( Cyprinus  carpio L.) fed  with  β-glucan  supplements. Fish Shellfish Immunol. , 32: 1051–1057. Greiner,  L.L.,  T.S.  Stahly,  and  T.J.  Stabel. 2001.  The  effect  of  dietary  soy genistein  on  pig  growth  hand  viral replication during a viral challenge. J. Anim. Sci. , 79(5): 1272.
Gunatilaka,  A.A.  2006.  Natural  products from  plant  associated  microorga- nisms:  distribution,  structural  diver- sity,  bioactivity,  and  implications  of their  occurrence. J.  Nat.  Prod. ,  69: 509–526.
Hai, N.V. and R. Fotedar. 2009. Comparison of  the  effects  of  the  prebiotics  (bio- mos®  and  β-1,3-D-glucan)  and  the customised  probiotics  ( Pseudomonas synxantha and P.  aeruginosa )  on  the culture  of  juvenile  western  king
prawns ( Penaeus latisulcatus ).
Aquaculture , 289:310-316.
Jia,  M.,  L.  Chen,  H.  Xin,  C.  Zheng,  K.
Rahman, T. Han, and L. Qin. 2016. A Friendly relationship between endophytic fungi and medicinal plants: a systematic review. Frontiers in Microbiology , 7: 906.
Kühlwein,  H.,  D.L.  Merrifield,  M.D. Rawling, A.D. Foey, and S.J. Davies. 2014.  Effects  of  dietary  β-(1,  3)  (1,
6)-D-glucan supplementation on growth  performance,  intestinal  mor- phology  and  haemato  immunological profile  of  mirror  carp  ( Cyprinus carpio L.). J.  Anim.  Physiol.  Anim.
Nutr. , 98: 279–289.
Kusmiati, S.R. Tamat, S. Nuswantara, dan N. Isnaini. 2007. Produksi dan penetapan kadar β-glukandari tiga galur Saccharomyces cerevisiae dalam media  mengandung  molase. J.  Ilmu Kefarmasian Indonesia , 5(1): 7-16. López,  N.,  G.  Cuzon,  G.  Gaxiola,  G. Taboada,  M.  Valenzuela,  C.  Pascual, A.  Sánchez,  and  C.  Rosas.  2003. Physiological,  nutritional,  and  im- munelogical  role  of  dietary  β  1–3 glucan  and  ascorbic  acid  2-mono- phosphate  in Litopenaeus  vannamei juveniles. Aquaculture , 224:223–243.
Meena,  D.K.,  P.  Das,  S.  Kumar,  S.C. Mandal,  A.K.  Prusty,  S.K.  Singh, M.S. Akhtar, B.K. Behera, K. Kumar, A.K. Pal, and Mukherjee. 2012. Beta- glucan:  an  ideal  immunostimulant  in aquaculture  (a  review). Fish  Physiol Biochem , 39(3):431-57.
Nejad,  P.  and  P.A.  Johnson.  2000.  Endo- phytic bacteria induce growth promo- tion  and  wilt  disease  suppression  in oilseed  rape  and  tomato. Biol. Control. , 18: 208-215.
Nejad, Z.S., M.H. Rezaei, G.A. Takami, D.L. Lovett, G.A.R Mirva, and M. Shakouri. 2006. The effect of Bacillus spp.  bacteria  used  as  probiotics  on digestive  enzyme  activity,  survival
and growth in the Indian white shrimp Fenneropenaeus  indicus . Aquacul- ture, 252: 516-524.
Paulsen,  S.M.,  R.E.  Engstad,  and  B. Robertsen. 2001. Enhanced  lysozyme production  in  Atlantic  salmon  ( S. salar L.)  macrophage  treated  with yeast  β-glucan  and  bacterial  lipopo- lysaccharide. Fish Shellfish Immunol. , 11: 23–37.
Peterson, E.P. and M.B. Walke. 2001. Effect of  speed  on  Taiwanese  paddle  wheel aeration. Aquaculture  Engineering , 26: 129-147.
Pionnier,  N.,  A.  Falco,  J.  Miest,  P.  Frost,  I.
Irnazarow,  A.  Shrive,  and  D.  Hoole. 2013.  Dietary  β-glucan  stimulate complement  and  C-reactive  protein acute  phase  responses  in  common carp  ( Cyprinus  carpio )  during  an
Aeromonas  salmonicida infection. Fish Shellfish Immunol. , 34: 819–831. Pionnier,  N.,  A.  Falco,  J.J.  Miest,  A.K. Shrive,  dan  D.  Hoole.  2014.  Feeding common  carp Cyprinus  carpio with β-glucan  supplemented  diet  stimu- lates  C-reactive  protein  and  comple- ment  immune  acute  phase  responses following  PAMPs  injection. Fish Shellfish Immunol. , 39: 285–295.
Sakai,  M.  1999.  Current  research  status  of fish  immunostimulants. Aquaculture , 172: 63-92.
Suciati,  A.,  Wardiyanto,  dan  Sumino.  2012.
Efektifitas  ekstrak  daun Rhizophora mucronata dalam  menghambat  per- tumbuhan Aeromonas  salmonicida dan Vibrio harveyi . J. Rekayasa dan Teknologi Budidaya Perairan , 1(1):1-
8.
Swann,  L.D.,  J.E.  Morris,  and  D.  Selock. 1994. Cage culture of fish in the
North  Central  Region.  Technical Bulletin  Series  #110.  United  States Department of Agriculture. US. 14p. Tarman,  K.  2011.  Biological  and  chemical investigations  of  Indonesian  marine- derived  fungi  and  their  secondary metabolites.  Dissertation.  Greifswald University. Germany. 193p.
Tarman,  K.,  U.  Lindequist,  G.J.  Palm,  and M.  Unterseher.  2011a.  Bioactive metabolites  of  fungi  from  Indonesian marine  habitats.  Asian  Mycological Congress  2011  and  the  12 th Interna- tional  Marine  and  Freshwater  Myco- logy Symposium, Convention Center, University of Incheon, Incheon. 07-11 Agustus 2011. 456p.
Tarman,  K.,  U.  Lindequist,  K.  Wende,  A. Porzel,  N.  Arnold,and  L.A.  Wessjo- hann.  2011b.  Isolation  of  a  new product  and  cytotoxic  and  antimicro- bial  activities  of  extracts  from  fungi of Indonesian marine habitats. Marine Drugs , 9:294-306.
Vanessa,  M.C.  and  M.M.F  Christopher. 2004.  Analysis  of  the  endophytic actinobacterial population in the roots of  wheat  ( Triticum  aestivum L)  by terminal  restriction  fragment  length polymorphism and sequencing of 16S rRNA  clones. Appl.  Environ.  Micro- biol. , 65(6):2741-2744.
Zarain-Herzberg,  M.,  F.  Iliana,  and  H. Alfredo.  2010.  Advances  in  intensi- fying  the  cultivation  of  the  shrimp Litopenaeus  vannamei in  floating cages. J. Aquaculture , 300:87–92.
Diterima : 3 Februari 2016 Direview : 3 Maret 2016 Disetujui : 22 Desember 2016