Pengaruh Fermentasi Oleh Effective Microorganis -4 (EM-4) Terhadap Kadar Kurkumin Ekstrak Rimpang Temulawak ( Curcuma xanthorrhiza Roxb. )
(The Influence of Fermentation by Effective Microorganism-4 (EM-4) on the Curcumin Content of Temulawak (Curcuma xanthorrhiza Roxb.) Rhizomes Extract)
Anita Karolina, I Nyoman Adi Winata,  Ika Oktavianawati Jurusan Kimia, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Jember (UNEJ)
Jln. Kalimantan 37, Jember 68121
E-mail : adiwinata.fmipa@unej.ac.id

## Abstrak
Curcuma   xanthorrhiza Roxb.   merupakan   tanaman   asli   Indonesia   yang   lebih   dikenal   sebagai   temulawak.   Rimpang temulawak   merupakan   salah   satu   bahan   untuk   pembuatan   jamu   ternak.   Jamu   ternak   berfungsi   untuk   meningkatkan produktivitas ternak. Pembuatan jamu ternak relatif murah dan mudah, yaitu dengan mencampurkan rimpang temulawak yang telah dihaluskan dengan cairan EM4. Campuran tersebut difermentasi selama 7 hari pada wadah tertutup. Kandungan kimia utama dalam rimpang temulawak adalah kurkumin. Penelitian untuk mengetahui  pengaruh fermentasi  oleh EM4 (dengan variasi volume 10, 20 dan 30 ml) terhadap kadar kurkumin yang diperoleh dari ekstrak rimpang temulawak yang dianalisa dengan menggunakan metode KLT-Densitometri, menunjukkan semakin banyak EM4 yang ditambahkan, semakin besar  kadar  kurkumin yang diperoleh.  Namun, pada  penambahan  EM4 sebanyak  10 dan 20 ml  kadar  kurkumin yang diperoleh lebih sedikit dibanding kontrol (tanpa penambahan EM4). Hal tersebut didukung dengan adanya dua spot baru selain spot pada larutan standar dengan intensitas yang besar. Sedangkan pada penambahan EM4 30 ml memiliki kadar kurkumin paling besar.
Kata Kunci: Fermentasi, Jamu ternak, KLT-Densitometri, Kurkumin, Rimpang temulawak .

## Abstract
Curcuma xanthorrhiza Roxb. is localy known as temulawak in Indonesia. Temulawak rhizomes is one kind of material for livestock herbal medicine production. This livestock herbal medicine is aimed to increase the livestock productivity. The production of this livestock herbal medicine is relatively easy, by mixing the temulawak rhizomes powder with EM4 and then followin by fermentation usin EM4 for 7 days on closed container. It is enerally known that the main chemical content in the temulawak  rhizome is curcumin. Therefor, this research is aimed to investigate the influence of fermentation using EM4 (vary in volume 10, 2 and 30 ml) on the curcumin content of temulawak rhizome extract analysis using TLC-scanner (densitometry) showed that the increasing number of EM4 that was added has increased the curcumin content on the extract. However, the addition of EM4 as much as 10 and 20 ml on the extract shows a lower curcumin content compared to control (no EM4). This phenomenon was supported by the availability of two new thick spots under curcumin spot on the TLC with large intensity. And the addition of EM4 as much as 30 ml have the greater content of curcumin.
Keywords: Curcumin, Fermentation, herbal medicine, KLT-Drnsitometry, Temulawak rhizomes.

## PENDAHULUAN
Jamu atau obat tradisional sudah dikenal dan digunakan di seluruh dunia sejak waktu yang lama  [1]. Penggunaan obat   yang   berasal   dari   bahan   alam   oleh   masyarakat Indonesia   sudah   dimulai   sejak   zaman   dahulu,   terutama dalam upaya pencegahan penyakit, peningkatan daya tahan tubuh, mengembalikan kebugaran tubuh setelah melahirkan atau bekerja keras, bahkan kecantikan wanita [2].
Pemanfaatan jamu bukan hanya untuk manusia, tetapi juga untuk hewan. Terhadap hewan, pemberian jamu dapat meningkatkan   produktivitas.   Jamu   untuk   hewan   telah dimanfaatkan oleh peternak pada peternakan tradisional di daerah dan penggunaannya semakin meningkat akhir-akhir ini, meskipun sosialisasi dan promosi obat atau jamu untuk hewan   kurang   gencar   dibandingkan   jamu   untuk   manusia [3].
Rimpang   temu-temuan   merupakan   bahan   utama pembuatan jamu hewan. Salah satunya adalah rimpang dari
tanaman   temulawak   ( Curcuma   xanthorrhiza Roxb.). Pembuatan jamu herbal untuk ternak tergolong sederhana. Bahan mula-mula dibersihkan kemudian dicuci, selanjutnya dirajang   dan   dihaluskan,   kemudian   ditambahkan   dengan larutan Effective   Microorganism -4   (EM4)   sebagai fermentor,   dimasukkan   ke   dalam   wadah   tertutup   dan didiamkan   selama   beberapa   hari,   campuran   kemudian disaring,   filtratnya   merupakan   jamu   herbal   yang   siap digunakan [4].
Rimpang temulawak dilaporkan mengandung terpenoid, fenol,   flavonoid,   saponin,   alkaloid,   kumarin   [5]   Menurut Hayani   [6],   dalam   rimpang   temulawak   terkandung   kadar pati, abu dan kurkumin. Warna kuning temulawak berasal dari   senyawa   turunan   fenol   yang   termasuk   kelompok kurkuminoid.   Ada   dua   senyawa   kurkuminoid   yang ditemukan   pada   temulawak,   yaitu   kurkumin   dan demetoksikurkumin   [7].   Dalam   artikel   ini   akan   dibahas mengenai   pengaruh   fermentasi   oleh effective microorganism-4 (EM-4) terhadap kadar kurkumin ekstrak
BERKALA SAINSTEK 2018, VI (2): 84-88
rimpang temulawak ( Curcuma xanthorrhiza Roxb.).

## METODE PENELITIAN

## Bahan
Bahan-bahan   yang   digunakan   yaitu  Bahan   yang digunakan   dalam   penelitian   ini   terdiri   atas:   rimpang temulawak,   larutan   EM-4,  akuades,   kertas   saring,   plastik wrap,   aluminium   foil,     kloroform   p.a,   etanol   p.a,   asam asetat glasial p.a, aseton p.a, plat KLT Silika Gel F 254 .

## Sumber Sampel
Sampel berasal dari Hutan Lindung PTPN XII dan telah diuji  keabsahannya   di   Laboratorium   Botani   dan   Kultur Jaringan,   Jurusan   Biologi   Fakultas   Matematika   dan   Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Jember.

## Preparasi Sampel
Tanaman   rimpang   temulawak   dicuci   untuk menghilangkan   kotoran-kotoran   yang   melekat   pada rimpang.   Pencucian   dilakukan   sesingkat   mungkin   untuk menghindari   larut   dan   terbuangnya   zat   yang   terkandung dalam rimpang. Rimpang yang telah dibersihkan ditimbang ±50   gram   sebanyak   12   wadah   dengan   berat   yang   sama. Hasil   penimbangan   dihaluskan   dengan   menggunakan blender . Dari sampel yang sama, digunakan sebagian untuk pengujian kadar air.

## Uji Kadar Air Rimpang
Simplisia ditimbang seberat ± 5 gram (W1), kemudian diletakkan   dalam   wadah.   Wadah   berisi   simplisia dimasukkan   ke   dalam   oven   selama   60   menit   pada   suhu 105˚C. Kemudian dimasukkan ke dalam desikator selama 10   -   20   menit   dan   ditimbang   (W2).   Perlakuan   tersebut dilakukan   berulang-ulang   hingga   memperoleh   berat konstan.

## Fermentasi Sampel
Hasil penghalusan masing-masing dimasukkan ke dalam erlenmeyer. Tiga erlenmeyer pertama ditambahkan aquades 100 ml dan diaduk hingga homogen, Tiga erlenmeyer kedua ditambahkan   dengan   10   mL   EM-4   dan   aquades   100   ml kemudian diaduk hingga homogen. Tiga erlenmeyer ketiga ditambahkan   dengan   20   ml   EM4   dan   aquades   100   ml, kemudian   diaduk   hingga   homogen.   Tiga   Erlenmeyer sisanya ditambahkan dengan 30 ml EM4 dan aquades 100 ml, kemudian diaduk hingga homogen. Semua Erlenmeyer ditutup   dengan   plastic   wrap.   Semua   campuran   kemudian didiamkan (difermentasi) selama tujuh hari. Setelah tujuh hari,   sampel   disaring   dengan   penyaring   kasar,   kemudian disaring   lagi   dengan   kertas   saring.   Filtrat   kemudian diekstraksi   dengan   50   mL   kloroform   sebanyak   tiga   kali pengulangan   dengan   menggunakan   corong   pisah.   Fraksi kloroform   selanjutnya   dipekatkan   dengan   evaporator. Padatan   yang   diperoleh   lalu   ditimbang   untuk   dihitung jumlah rendemennya.
Kurkumin   standar   ditimbang   sebanyak   1   mg, dimasukkan   ke   dalam   botol   vial   kemudian   ditambahkan dengan   aquades   dan   EM4,   diaduk   hingga   homogen, didiamkan   selama   tujuh   hari.   Kurkumin   standar   ini digunakan sebagai control positif.
Scanning Penentuan Panjang Gelombang Maksimum Larutan standar kurkumin 1 ppm dimasukkan ke dalam kuvet. Dilakukan scanning menggunakan spektrofotometer Visible pada   rentang   panjang   gelombang   350   –   450   nm
dengan interval 2 nm.

## Pembuatan Kurva Standar Kurkumin
Larutan standar kurkumin 10 ppm ditotolkan pada plat KLT masing-masing sebanyak 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18 dan 20 µL. Penotolan dilakukan pada jarak 1 cm dari bawah, kanan dan kiri plat, jarak antar totolan 1 cm. Eluen yang digunakan   yaitu   campuran   dari   pelarut kloroform:etanol:asam  asetat  glasial dengan perbandingan 97:2:1. Eluen dibiarkan hingga berjalan 9,5 cm dari batas bawah   plat   KLT.   Plat   KLT   diangkat   dan   dikeringkan dengan   menggunakan hair   dryer .   Plat   KLT   dipindai menggunakan TLC   Scanner .   Data   yang   diperoleh   dibuat kurva standar kurkumin dengan sumbu x merupakan massa (ng) dan sumbu y merupakan luas area (AU).

## Analisis Kadar  Kurkumin
Padatan   yang   diperoleh   dari   prosedur   3.4.4   masing- masing dilarutkan dengan aseton menggunakan labu ukur 5 mL, kemudian dimasukkan ke dalam botol vial. Masing- masing   sampel   ditotolkan   pada   plat   KLT   dengan menggunakan   pipet   mikro   1-10   µl.   Penotolan   dilakukan secara bertahap dengan proses pengeringan menggunakan hair dryer . Penotolan dilakukan pada jarak 1 cm dari batas bawah  plat, 1 cm  dari  samping kanan  dan kiri  plat, dan jarak   masing-masing   totolan   adalah   1   cm.   Setelah   prose penotolan, plat dieluasi hingga berjalan   9,5 cm dari batas bawah   plat.   Plat   diangkat   dan   dikeringkan.   Plat   KLT dipindai   menggunakan TLC   Scanner pada   panjang gelombang   yang   diperoleh   pada   prosedur   3.4.5.  Kontrol yang   digunakan   yaitu   sampel   tanpa   penambahan   EM4 (kontrol   negatif)   dan   larutan   standar   kurkumin   yang difermentasi   (kontrol   positif).   Perubahan   konsentrasi senyawa   kurkumin   dalam   ekstrak   temulawak   ditentukan dengan cara membandingkan luas peak area spot yang Rf- nya sama pada sampel dibandingkan dengan kontrol.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Kadar Air Rimpang Temulawak
Sampel   rimpang   temulawak   pada   penelitian   ini memiliki   kadar   air   rata-rata   sebesar   76,32   %.   Kadar   air yang diperoleh dari pengukuran sampel serupa dengan yang dilaporkan   oleh   Endrasari  [8]  bahwa   kadar   air   rimpang temulawak segar sekitar 75–80 % (lampiran B). Kadar air hasil perhitungan selanjutnya digunakan untuk menghitung rendemen   kurkumin   hasil   ekstraksi,   dengan mensubtitusikan ke dalam perhitungan rendemen.

## Rendemen Hasil Fermentasi
Rendemen   ekstrak   rimpang   temulawak   dihitung berdasarkan perbandingan antara berat rimpang temulawak sebelum dan sesudah evaporasi. Rendemen diperoleh dalam bentuk   presentase.   Hasil   perhitungan   ditunjukkan   pada Tabel 1.
Tabel 1. Rendemen hasil fermentasi Nama ekstrak Rendemen (%) Tanpa EM4-1 0,56±0,049 EM4 10-1 0,11±0,049 EM4 20-1 0,28±0,049 EM4 30-1 0,42±0,001 Secara   umum,   rendemen   sampel   dengan   penambahan BERKALA SAINSTEK 2018, VI (2): 84-88 ISSN : 2339-0069
EM4 lebih rendah dibandingkan tanpa penambahan EM4. Semakin   banyak   volume   EM4   yang   ditambahkan, rendemen yang dihasilkan semakin besar. Rendemen tanpa penambahan EM4, dengan penambahan 10, 20 dan 30 ml EM4 berturut-turut adalah 0,56; 0,11; 0,28 dan 0,42%.
Besarnya   rendemen   kemungkinan   dipengaruhi   oleh banyaknya jumlah komponen yang terekstrak selama proses ekstraksi.   Nilai   rendemen   yang   diperoleh   tidak   dapat menentukan   banyaknya   kadar   kurkumin   yang   terekstrak, karena   kemungkinan   bukan   hanya   kurkumin   saja   yang terekstrak selama proses ekstraksi.
Faktor pelarut juga dapat mempengaruhi, sampel tanpa penambahan   EM4   hanya   menggunakan   pelarut   air, sedangkan sampel dengan penambahan EM4 menggunakan pelarut   campuran   air   dengan   EM4.   Hal   tersebut menyebabkan   senyawa   yang   larut   dalam   air   akan   turut terekstrak sehingga menyebabkan rendemen lebih besar.

## Panjang Gelombang Maksimum Kurkumin
Larutan standar kurkumin 1 ppm diukur absorbansinya pada   rentang   panjang   gelombang   400   –   450   nm.   Hasil scanning menunjukkan   bahwa   panjang   gelombang maksimum larutan standar  kurkumin yaitu 420 nm, yang tertera   pada   gambar   1.   Hal   ini   senada   dengan   yang diungkapkan   oleh   Wang   [9],   bahwa   panjang   gelombang maksimum   kurkumin   adalah   420   nm.   Adanya   ikatan rangkap   terkonjugasi   yang   banyak   pada   kurkumin menyebabkan   transisi    *   menjadi   mudah (memerlukan   energi   yang   rendah),   sehingga   serapan maksimum   pada   panjang   gelombang   yang   besar   (daerah visible ).
Gambar 1. Hasil scanning panjang gelombang maksimum Panjang   gelombang   maksimum   yang   dihasilkan digunakan untuk memindai spot pada plat KLT hasil elusi. Saat   proses   pemindaian   oleh   TLC   Scanner,   sinar   yang dipantulkan memiliki arah yang pasti, yaitu menuju bercak noda.   Sinar   ini   sangat   sensitif   sehingga   perlu   diketahui panjang   gelombang   maksimumnya   untuk   setiap   senyawa yang akan dianalisa.

## Kurva Standar Kurkumin
Hasil   yang   diperoleh   menunjukkan   bahwa   standar kurkumin   tidak   murni   karena   hasil   elusi   menampilkan adanya tiga spot pada Rf 0,42; 0,69 dan 0,88. Tiga noda tersebut   disinyalir   merupakan   senyawa   kurkumin   dan turunannya,   yaitu   kurkumin,   demetoksikurkumin   dan bisdemetoksikurkumin. Tiga noda yang terbentuk pada plat
KLT senada dengan yang telah dilakukan oleh Fitrianti [10] dan Srijanto [11], yang hasilnya menunjukkan adanya tiga noda yang terdeteksi dari larutan standar kurkumin, yaitu kurkumin, demetoksikurkumin dan bisdemetoksikurkumin. Kromatogram yang diperoleh ditampilkan pada Gambar 2.

## Gambar 2. Kromatogram larutan standar kurkumin
Untuk   membuat   kurva   standar   kurkumin,   konsentrasi kurkumin   pada   masing-masing   totolan   harus   diketahui. Dalam   hal  ini,  dilakukan scanning dengan   menggunakan densitometer pada panjang gelombang 420 nm. Sinar dari scanner   yang   mengenai   spot   akan   diserap   oleh   molekul untuk   tereksitasi,   selanjutnya   molekul   akan   kembali   ke keadaan   dasar   dengan   mengemisikan   sinar   tersebut (fluoresensi) dan akan ditangkap oleh detector [12].
Data yang diperoleh dari hasil scanning ini yaitu luas area   dengan   satuan Absorbation   Unit (AU), Retardation factor (Rf),   dan   luas   area   dalam   persen   (%).   Data   hasil scanning disajikan   dalam   kurva   kalibrasi   larutan   standar kurkumin dapat dilihat pada Gambar 3.
Gambar 3 . Kurva standar larutan kurkumin

## Kadar Kurkumin Hasil Ekstraksi Rimpang Temulawak
Sampel   dengan   penambahan   EM4   mengandung senyawa selain kurkuminoid yang   lebih   banyak dibandingkan   dengan   sampel   tanpa   penambahan   EM4 seperti   yang   terlihat   pada   kromatogram   (Gambar   4).   Air memiliki   kemampuan   maksimum   untuk   melarutkan senyawa yang merupakan campuran. Adanya senyawa lain yang ikut terekstrak pada sampel dengan penambahan EM4 dapat   mengurangi   kadar   kurkumin   yang   larut,   sehingga hasil perhitungan diperoleh kadar kurkumin yang diekstrak dengan   penambahan   EM4   lebih   rendah   dibanding   tanpa penambahan EM4.
a
b c d e
Gambar   4. Kromatogram   sampel   hasil   ekstrak   rimpang temulawak
Visualisasi   pada   gambar   4,   plat   menunjukkan kromatogram yang dihasilkan berbeda-beda, yaitu ada yang terbentuk tiga dan lima spot. Spot-spot yang terbentuk ada yang   sesuai   dengan   larutan   standar   dan   ada   yang   tidak sesuai. Kromatogram paling kiri merupakan totolan larutan standar,   dimana   larutan   tersebut   menghasilkan   tiga   spot yang disebut kurkuminoid. Tiga kromatogram selanjutnya yaitu   berturut-turut   merupakan   spot   daro   totolan   sampel dengan   penambahan   10,   20   dan   30   ml   EM4.   Dan kromatogram yang paling kanan yaitu kontrol positif.
Sampel tanpa penambahan EM4 terbentuk spot a, b dan c dimana intensitas spot c paling tipis dibandingkan dengan spot   a   dan   b,   sehingga   kadar   kurkumin   yang   diperoleh tinggi. Sampel dengan penambahan EM4 sebanyak 10 dan 20 ml terbentuk dua spot diluar spot yang dibentuk larutan standar, yaitu spot b dan d dimana intensitas spot b lebih besar   dibandingkan   dengan   spot   a   yang   merupakan   spot kurkumin, sedangkan spot a, c dan e lebih tipis, sehingga kadar   kurkumin   yang   diperoleh   lebih   sedikit.   Dan   untuk sampel dengan penambahan EM4 30 ml terbentuk spot b dan d dengan  intensitas lebih kecil  dibandingkan dengan spot b dan d pada sampel dengan penambahan 10 dan 20 EM4. Sedangkan spot a, c dan e memiliki intensitas lebih tebal   dibanding   spot   a,   c   dan   e   pada   sampel   yang   lain, sehingga   kadar   kurkumin   yang   dihasilkan   lebih   besar dibandingkan dengan sampel lain.
Kadar   kurkumin   dalam   sampel   dihitung   dengan menggunakan   persamaan   pada   kurva   kalibrasi   larutan standar   kurkumin.   Luas   area   yang   diperoleh   dari   hasil pemindaian dengan TLC Scanner sampel  dimasukkan ke dalam persamaan kurva kalibrasi, sehingga diketahui massa kurkumin  yang  diperoleh   dan  juga  kadar  kurkumin  pada sampel.   Kadar   kurkumin   dapat   diketahui   dengan membandingkan massa kurkumin yang diperoleh dari hasil perhitungan dengan massa sampel yang diperoleh dari hasil evaporasi,   yaitu   yang   datanya   tersajikan   pada   Tabel   1 sebelumnya. Data secara ringkas dapat dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2. Kadar kurkumin dalam ekstrak
Nama Sampel Kadar kurkumin (mg/kg) Tanpa EM4 0,79x10 -3 ± 0.00016 EM4 10 ml 0,49x10 -3 ± 0,00011 EM4 20 ml 0,53x10 -3 ± 0,00009 EM4 30 ml 3,38x10 -3 ± 0,00007 Kontrol positif 8,6 x 10 -5
Secara   umum,   kadar   kurkumin   semakin   bertambah seiring   dengan   semakin   banyaknya   penambahan   volume EM4. Kadar kurkumin dengan penambahan 10, 20 dan 30 ml EM4 berturut-turut yaitu 0,49 x 10 -3 mg/kg; 0,53 x 10 -3 mg/kg; dan 3,38 x 10 -3 mg/kg.
Kadar   kurkumin   dengan   penambahan   10   dan   20   ml EM4   lebih   sedikit   dibandingkan   dengan   sampel   tanpa penambahan EM4, yaitu 0,49 x 10 -3 mg/kg  dan 0,53 x 10 -3 mg/kg   dibanding   dengan   0,79   x   10 -3 mg/kg.   Sedangkan sampel dengan penambahan 30 ml EM4 mengandung kadar kurkumin lebih besar, yaitu 3,38 x 10 -3 mg/kg.
Kadar   kurkumin   dalam   ekstrak   temulawak   yang diekstrak   dengan   penambahan   EM4   lebih   rendah   dari ekstrak temulawak yang diekstrak tanpa penambahan EM4. Kurkumin   kemungkinan   terdekomposisi   dengan   adanya penambahan   EM4   sehingga   kadar   kurkumin   pada penambahan 10 dan 20 ml EM4 lebih sedikit dibandingkan dengan   tanpa   penambahan   EM4.   Pada   kondisi   tersebut, bakteri diperkirakan masih berada pada fase adaptasi ( lag phase ). Sedangkan pada penambahan 30 ml EM4, bakteri telah   mencapai   fase   eksponensial   ( log   phase )   sehingga kadar   yang   dihasilkan   paling   besar.   Pada   fase   adaptasi, bakteri tidak mengalami pertambahan populasi sel, namun mengalami perubahan komposisi kimiawi. Sedangkan pada fase   eksponensial,   bakteri   telah   melakukan   konsumsi nutrien dan proses fisiologis lainnya [13].

## KESIMPULAN
Semakin   banyak   volume   EM4   yang   ditambahkan, semakin   besar   kadar   kurkumin   yang   diperoleh.   Kadar kurkumin yang diperoleh berturut-turut untuk penambahan EM4 10, 20 dan 30 EM4 sebesar 0,49 x 10 -3 mg/kg; 0,53 x 10 -3 mg/kg; dan 3,38 x 10 -3 mg/kg.
Sampel   dengan   penambahan   10   dan   20   ml   EM4 terbentuk spot baru yang tidak terdapat pada larutan standar kurkumin (spot b dan d), dengan kadar yang cukup besar, sehingga   kadar   kurkumin   yang   terhitung   menjadi   lebih rendah   dibandingkan   dengan   sampel   tanpa   penambahan EM4. Sebaliknya, pada penambahan 30 ml EM4, intensitas spot   kurkumin   yang   terbentuk   lebih   tebal   dibandingkan dengan penambahan 10 dan 20 ml EM4. Spot b dan d yang terdapat pada lane 30 ml EM4 ini lebih tipis dibandingkan spot yang terdapat  dalam sampel dengan penambahan 10 dan 20 ml EM4. Hal ini menyebabkan kadar kurkumin yang terhitung menjadi paling besar.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis   mengucapkan   terima   kasih   kepada   pihak penguji   atas   kritik,   saran   dan   masukan   yang   diberikan. Ucapan   terima   kasih   juga   disampaikan   kepada   Jurusan Kimia Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan  Alam Universitas Jember dalam pelaksanaan penelitian ini hingga selesai.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] Bakri, B.D. 2002. Uji Adaptasi Pemberian Jamu pada Ayam Buras Potong . Jakarta: BTP.
[2] Badan POM RI. 2011. Info Badan POM RI : Mari Minum Obat Bahan Alam dan Jamu dengan Baik dan Benar . Vol. 12 (3): 1829 – 9334.
ISSN : 2339-0069
[3] Sarwono. 2005. Jamu untuk Ternak. Jakarta: Penebar
Swadaya.
[4] Harwono,   R.   2013. Jamu   Herbal   untuk   Ayam
Kampung . Tanpa tahun.
[5] Halim,   Tan,   Ismail,   dan   Mahmud.   2012. Standarization and Phytochemical Studies of Curcuma Xanthorrhiza   Roxb. International   Journal   Of Pharmacy And Pharmaceutical Science, 4 (3): 606 – 610.
[6] Hayani, E. 2006. Analisis Kandungan Kimia Rimpang Temulawak.   Bogor   :   Balai   Penelitian   Tanaman Rempah dan Obat.
[7] Said, A., 2007. Buku Pengayaan Seri PKK: Khasiat dan   Manfaat   Temulawak .   Yogyakarta:   PT.   Sinar Wadja Lestari.
[8] Endrasari,   R.,   Qanytah.,   dan   Prayudi,   B.   2008. Pengaruh   Pengeringan   terhadap   Mutu   Simplisia Temulawak di Kecamatan Tembalang Kota Semarang .
Semarang: Balai Pengkajian Teknologi Jawa Tengah . [9] Wang, Y.J et al . 1996. Stability of Curcumin in Buffer
Solutions   and   Characterization   of   Its   Degradation Products. Journal of Pharmaeutical and Biomedical Analisys. 15 (12): 1867 – 1876.
[10] Fitrianti, S.C. 2011. Diferensiasi Temulawak, Kunyit, dan   Bangle   Berdasarkan   Interpretasi   Kromatografi Lapis Tipis Menggunakan IMAGEJ . Skripsi . Bogor: Institute Pertanian Bogor.
[11] Srijanto, B., I. Rosidah, E. Rismana, G. Syabirin, Aan dan   Mahreni.   2004.   Pengaruh   Waktu,   Suhu   dan Perbandingan   bahan   Baku-Pelarut   pada   Ekstraksi Kurkumin   dari   Temulawak   ( Curcuma   xanthorriza Roxb.)   dengan   Pelarut   Aseton.   Prosiding   Seminar Nasional   Rekayasa   Kimia   Dan   Proses   2004.   1411- 4216.
[12] Braithwaite,   A   dan   Smith,   F.J.   1996. Chromatographics   Methods .   5 th ed.   Netherlands:
Kluwer Academic Publishers.
[13] Monod, J. 1949. The Growth of Bacterial  Cultures. Annual Reviews Microbial, 3, 371-394.