## Kontaminasi Mikroplastik pada Perna viridis di Teluk Lampung
Zakiyah Rahim 1 , Neviaty Putri Zamani 2* , Meutia Samira Ismet 2
1 Program Studi Ilmu Kelautan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University
2 Departemen Ilmu dan Tekonologi Kelautan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB University Dramaga Bogor, Jawa Barat, Indonesia Email: neviaty@apps.ipb.ac.id

## Abstract

## Microplasti contamination in Perna viridis of Lampung Bay
Fisheries activity in Lampung Bay which has been very active in recent years is the cultivation of green mussels (P. viridis) for consumption.  Located  in  Teluk  Betung  Timur  sub-district,  this  is  considered  appropriate  because  of  the  environmental parameters that support the life of P. viridis. The location of P. viridis cultivation is not far from coastal settlements (±500-600 m from settlements). Anthropogenic activities of coastal residents as well as the use of plastic materials in the cultivation are concerned to be the source of microplastic contamination that found in P. viridis. This study aims to determine the presence and characteristics of microplastics in P. viridis as well as to compare the abundance of microplastics in the gills and digestive organs.  Taking  30  P.  viridis  by  purposive  sampling  with  homogeneous  size.  The  samples  were  analyzed  by  microplastics  in chemical oceanography and biology micro Laboratory, FPIK, IPB University. P. viridis tissue was destructed by using 10% KOH solution at a ratio of 1:3 (m/v) at 60 °C for 24 hours and then filtered using a 1.6 µm Whatman GF/A filter paper. Abundance of microplastics in whole soft tissue were 0.53±0.7 mgl/g. The gill organs were found to be more microplastic than the digestive organs (p<0.05). The fragments microplastic is most commonly found in intact tissues and digestive organs, while fiber is mostly found in the gills of P. viridis. Blue color and size <100 µm were most commonly found in intact tissues, gills and digestive organs of P. viridis.
Keywords : Lampung Bay; Microplastic; P. viridis

## Abstrak
Kegiatan  perikanan  di  Teluk  Lampung  yang  sangat  aktif  dalam  beberapa  tahun  ini  yaitu  kultivasi  kerang  hijau  (P.  viridis) konsumsi.  Berlokasi  di  kecamatan  Teluk  Betung  Timur,  hal  ini  dinilai  tepat  karena  parameter  lingkungan  yang  menunjang kehidupan P. viridis. Lokasi pembesaran P. viridis tidak jauh dari pemukiman penduduk pesisir (±500-600 m dari pemukiman). Kegiatan antropogenik penduduk pesisir juga penggunaan material plastik pada sistem pembesaran dikhawatirkan dapat menjadi sumber cemaran mikroplastik yang terdapat pada P. viridis. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui keberadaan dan  karakteristik  mikroplastik  pada  P.  viridis  juga  membandingkan  kelimpahan  mikroplastik  pada  insang  dan  organ pencernaan. Pengambilan 30 P. viridis secara purposive sampling dengan ukuran homogen. Analisis mikroplastik dilakukan di laboratorium  oseanografi  kimia  dan  biologi  mikro,  FPIK,  Universitas  Pertanian  Bogor.  Destruksi  jaringan  P.  viridis  dengan menggunakan larutan KOH 10% perbandingan 1:3 (m/v) pada suhu 60 °C selama 24 jam lalu difiltrasi menggunakan filter paper whatman GF/A 1,6 µm. Mikroplastik tubuh kerang utuh yaitu 0,53±0,7 mgl/g. Organ insang lebih banyak ditemukan mikroplastik dibandingkan organ pencernaan (p<0,05). Bentuk fragmen paling banyak ditemukan di jaringan utuh dan organ pencernaan,  sedangkan  fiber  banyak  ditemukan  di  insang  P.  viridis.  Warna  biru  dan  ukuran  <100  µm  paling  banyak ditemukan di jaringan utuh, insang maupun organ pencernaan P. viridis.
Kata kunci : Mikroplastik; P. viridis; Teluk Lampung

## PENDAHULUAN
Permintaan dan produksi plastik diestimasikan meningkat 200 kali lipat selama 65 tahun terakhir seiring  bertambahnya  populasi  manusia,  namun  peningkatan  tersebut  tidak  disertai  dengan pengelolaan limbah yang tepat (Ritchie & Max, 2018). Limbah plastik yang sifatnya sulit terurai akan menumpuk dan menjadi ancaman lingkungan yang dapat mengganggu nilai estetika suatu lokasi (Thushari  &  Senevirathna,  2020)  menjadi  ancaman  bagi  berbagai  organisme  (Anastasopoulou  & Fortibuoni, 2019), menghambat aliran pada sistem buangan air Honingh et al. (2020), serta dapat menyerap dan melepaskan bahan polutan ke lingkungan (Teuten et al., 2009). Indonesia menjadi salah satu negara penyumbang limbah plastik tidak terkelola kedua tertinggi di dunia dan limbah tersebut diestimasikan masuk ke perairan laut sebanyak 1,29 juta ton metrik (Jambeck et al., 2015). Provinsi Lampung ikut disorot menjadi kontributor penyumbang limbah plastik perairan Indonesia,
sekitar  8000  ton  limbah  plastik  ditemukan  menumpuk  di  perairan  Teluk  Lampung  (DLH  Lampung, 2020).
Limbah plastik di perairan dapat terdegradasi secara kimiawi, fisikal, maupun biologis menjadi plastik  berukuran  1  µm  hingga  5  mm,  partikel  ini  disebut  sebagai  mikroplastik  (GESAMP,  2016). Mikroplastik terdistribusi secara luas di berbagai lapisan laut (Song et al., 2018). Distribusi yang luas dan ukurannya yang sangat kecil menyebabkan mudahnya mikroplastik menempel dan tertelan oleh berbagai organisme laut dari level tropik yang berbeda (Athey et al., 2020; Costa et al., 2020; Nelms et  al., 2018).  Organisme  tropik  terendah  diketahui  memiliki  resiko  paling  tinggi  terpapar kontaminasi mikroplastik (Walkinshaw et al., 2020).
Kerang  merupakan  salah  satu  organisme  tropik  rendah  yang  paling  mudah  terpapar mikroplastik  sebab  kerang  bersifat  sesil  dan  memiliki  kemampuan  untuk  menyaring  perairan disekitarnya (Setälä et al., 2016; Lusher, 2015). Kerang konsumsi yang terpapar mikroplastik menjadi salah satu jalur persebaran mikroplastik melalui rantai makanan yang akhirnya dapat terakumulasi pada  manusia,  terlebih  kerang  biasanya  dimakan  utuh  sehingga  tidak  dapat  dihindari  adanya mikroplastik (Baechler et al., 2019; Smith et al., 2018; Van Cauwenberghe & Janssen, 2014). Beberapa penelitian  banyak  menemukan  kehadiran  mikroplastik  pada  kerang  konsumsi,  penelitian  Li et  al. (2016)  mengungkapkan  bahwa  kerang Mytilus  edulis yang  diambil  dari  lokasi  pembesaran  di Perairan China mengandung 1,6 mikroplastik partikel (mp)/g, sedangkan M. edulis pada perairan cukup  tercemar  mikroplatik  ditemukan  3,3  mp/g. Perna  viridis dari  Perairan  India  ditemukan mengandung 0,33-1,53 mp/g (Patterson et al., 2021), sedangkan kandungan mikroplastik P. viridis di Indonesia yang berasal dari Perairan Lae-Lae sebanyak 0,04-0,13 mp/g (Fachruddin et al., 2019) dan Perairan Pangkajane sebanyak 0,32-0,60 mp/g (Ramli et al ., 2021).
Kerang hijau ( P. virdis ) banyak ditemukan pada Iokasi pembesaran Teluk Lampung. Kegiatan pembesaran P.  virdis berjarak  ±  600  m  dari  pemukiman  masyarakat  pesisir  dan  banyak menggunakan peralatan yang berbahan plastik. Jumlah dan jarak masyarakat yang hidup dekat dengan Iokasi pembesaran, serta penggunaan alat pIastik pada proses pembesaran disebut dapat berdampak  pada  kelimpahan  mikropIastik  di  tubuh  kerang  (Lusher et  al., 2017;  Li et  al., 2016). Kehadiran  mikroplastik  pada  kerang  hijau  konsumsi  diduga  menjadi  salah  satu  ancaman  bagi keamanan  pangan  dan  kesehatan  manusia  (De-la  -Torre,  2019;  Smith et  al., 2018;  Sharma  & Chatterjee,  2017),  namun  penelitian  mengenai  kelimpahan  mikroplastik  pada  kerang  hijau  dan penelusuran  organ  yang  paIing  banyak  ditemukan  mirkopIastik  masih  belum  banyak  dilakukan terutama pada P. viridis Teluk Lampung. lnformasi mengenai keberadaan mikroplastik di jaringan tubuh,  organ  insang,  dan  organ  pencernaan P.  viridis konsumsi  yang  diambil  dari  perairan  Teluk Lampung belum banyak terhimpun, hal ini mendorong dilakukannya penelitian ini.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kelimpahan dan karakteristik mikroplastik di seluruh jaringan  lunak  kerang  hijau  juga  membandingkan  kelimpahan  pada  bagian  insang  dan pencernaan P. viridis Teluk Lampung, sehingga diharapkan dapat menjadi bahan pertimbangan dalam penentuan keamanan pangan terutama pada kerang hijau konsumsi

## MATERI DAN METODE
Pengambilan  sampel  kerang  diambil  dari  perairan  Teluk  Lampung  pada  kecamatan  Teluk Betung  Timur  (Gambar  1)  pada  bulan  September  2020.  Analisis  dilakukan  di  laboratorium oseanografi kimia dan Biologi Mikro fakultas perikanan dan ilmu kelautan IPB. Lokasi penelitian dipilih berdasarkan metode purposive sampling dimana lokasi banyak ditemukan P. viridis konsumsi yang dikultivasi  menggunakan  alat  alat  berbahan  plastik  dan  berlokasi  tidak  jauh  dari  pemukiman masyarakat  pesisir.  Timur  Laut  lokasi  pengambilan  sampel  merupakan  Pulau  Pasaran  sedangkan pada  bagian  Utara  merupakan  pesisir  kecamatan  Teluk  Betung  Timur.  Pengambilan  sampel dilakukan pada satu lokasi dikarenakan lokasi tersebut merupakan satu satunya lokasi pembesaran P.  viridis di  wilayah  Lampung  yang  dekat  dengan  pemukiman  masyarakat  dan  banyak menggunakan peralatan berbahan plastik.
Gambar 1. Peta lokasi pengambilan sampel di Teluk Lampung
Sampel P. viridis diambil langsung pada satu lokasi pembesaran P. viridis . Lokasi pembesaran seluas ± 1 Ha. Kondisi perairan lokasi pembesaran saat pengambilan sampel sedang pasang dan kecepatan arus ± 0,02 m/s. Kerang diambil kurang lebih sebanyak 30 individu secara acak dengan ukuran terbanyak yaitu ukuran 6,5 cm. Ukuran 6,5 cm merepresentatifkan kerang dewasa, dimana pada  ukuran  tersebut  rata  rata P.  viridis telah  memiliki  fungsi  sistem  organ  yang  baik. P.  viridis diangkut tanpa penambahan media air selama diperjalanan dan  diletakkan langsung ke dalam freezer pada suhu -4 ⁰ C untuk kemudian dilanjutkan pada proses analisis.  Seluruh sampel P. viridis dengan  ukuran  panjang  yang  seragam  (6,5  cm)  diukur  lebar  dan  tinggi  cangkangnya menggunakan jangka sorong, dicuci bersih menggunakan air mengalir, kemudian ditimbang berat basahnya menggunakan neraca analitik. Proses analisis mikroplastik pada sampel P. viridis mengacu pada Dehaut et al. (2016) dan Thiele et al. (2019), sampel jaringan lunak utuh dari 30 individu kerang dibuat  menjadi  7  ulangan  dengan  banyak  4-5  individu P.  viridis ,  kemudian  insang  dan  organ pencernaan  dari  30  individu  lainnya  juga  dikompositkan  menjadi  6  ulangan  untuk  didestruksi, selanjutnya komposit jaringan kerang dimasukkan ke dalam tabung erlenmeyer kaca volume 100 ml. Komposit jaringan kerang kemudian didestruksi menggunakan larutan KOH 10% (w/v, 3× volume jaringan) lalu didiamkan pada suhu 60 °C selama 24 jam di dalam oven. Penambahan larutan KOH 10% bertujuan untuk menghilangkan materi organik P. viridis sehingga mikroplastik dapat dipisahkan (Rochman et al., 2015). Sampel kerang yang sudah terdestruksi selanjutnya disaring menggunakan kertas  saring  whatman GF/A  1.6  µm  menggunakan  alat vacuum  pump .  Kertas  saring  kemudian dikeringkan di oven paa suhu 40 °C selama 24 jam. Mikroplastik yang tersaring dari P. viridis kemudian diamati secara visual baik warna, bentuk, juga dihitung ukurannya menggunakan mikroskop stereo (Olympus  SZ61)  perbesaran  45  dengan  bantuan  kamera  yang  terintegrasi  dengan  software BetaView. Pengamatan bentuk, warna, dan ukuran mikroplastik secara  visual mengacu  GESAMP (2019) dan Barboza et al. (2018). Partikel mikroplastik yang teridentifikasi dihitung nilai kelimpahannya dengan satuan mp/g.
Analisis perbedaan kelimpahan mikroplastik pada insang dan organ pencernaan dilakukan menggunakan  Independent  Sample  t-Test,  analisis  Kruskal  wallis  digunakan  untuk  melihat perbedaan  kelimpahan  mikroplastik  berdasarkan  bentuk,  warna,  dan  ukuran  menggunakan software SPSS.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Total keseluruhan partikel mikroplastik dari 30 jaringan utuh P. viridis yang dibesarakan selama ± 6 bulan yaitu 56 partikel, sedangkan pada insang dan organ pencernaan yaitu 45 dan 14 partikel.
Kerang hijau memiliki rata rata ukuran panjang cangkang 6,5 cm dan berat basah rata rata 3,45 ± 0,6.  Jumlah  partikel  yang  ditemukan  pada P.  viridis sebanyak  0,53±0,07  mp/g  (n=  56  partikel). Kelimpahan mikroplastik di tubuh kerang juga berhubungan dengan banyaknya kegiatan manusia di sekitarnya (Li et al. , 2016). Kelimpahan mikroplastik P. viridis di Teluk Lampung relatif hampir sama dengan P. viridis perairan Sulawesi Selatan yang berkisar 0.32-0.6 mp/g (Ramli et al. , 2021), namun nilainya  lebih  rendah  dari  pada P.  viridis dari  perairan  Teluk  Jakarta  (Fathoniah  &  Patria,  2021). Kelimpahan mikroplastik di insang lebih banyak dibandingkan dengan organ pencernaan (Gambar 2) dengan nilai kelimpahan 1,5 ± 0,15 mp/g dan 0,23 ± 0,02 mp/g (p<0,05).
Kelimpahan mikropIastik lebih tinggi berada pada organ insang, begitu juga pada P. viridis yang diamati oleh Fathoniah & Patria (2021) dengan jumlah mikroplastik 551 mp pada insang dan 206  mp  pada  organ  pencernaan.  Insang  merupakan  organ  pertama  yang  akan  menangkap partikel  partikel  sebelum  akhirnya  terseleksi,  tertelan  dan  masuk  ke  dalam  organ  pencernaan (Riisgård  et  al.  2011,  2014).  Perairan  yang  dipompa  masuk  ke  dalam  tubuh  kerang  hijau  pada awalnya akan bergerak menuju insang dan mengarah ke bagian axial insang (dorsal), frontal silia (yang  terpapar  langsung  oleh  partikel)  akan  menangkap  partikel  yang  dianggap  sebagai makanan. Partikel yang sudah tertangkap kemudian ditransfer menuju bagian food groove (ventral) dan siap untuk dibawa menuju labial palp (Gosling, 2015). P. viridis memiliki tipe insang homorhabdic yang hanya dapat membawa partikel ke satu arah menuju labial palp (organel utama penyeleksi partikel), hal ini menyebabkan proses penyeleksian partikel untuk ditelan tidak maksimal, Walaupun demikian  insang  tetap  memproduksi  mukosa  yang  membantu  dalam  pengangkutan  partikel  ke labial palp (Ward et al., 2019b).
Mukosa juga terdapat pada labial palp , mukosa pada labial palp menyebabkan adanya interaksi  dengan  sifat  fisikokimia  partikel.  Penyeleksian  partikel  oleh labial  palp bergantung  dari ukuran,  bentuk,  hidropobisitas  permukaan  partikel  serta  ada  tidaknya  kandungan  nutrisi  pada partikel (Rosa et al. , 2018). Mukosa pada labial palp keluarga mytilidae akan memilih partikel yang secara fisik lebih hidropobik dan secara kimia memiliki permukaan yang mengandung glukosa agar bisa berikatan dengan lektin mukosa. Hal-hal inilah yang diduga kuat mempengaruhi perbedaan kelimpahan  mikroplastik  dimana  insang  lebih  banyak  mengakumulasi  mikroplastik  dibandingkan organ  penceraan.  Selain  itu,  penelitian  Madeppungeng et  al. (2021)  juga  membuktikan  bahwa banyak  mikroplastik  yang  tertahan  dibagian  axial  insang  dibandingkan  dengan  kelimpahan mikroplastik yang berada di bagian food groove insang P. viridis , artinya banyak mikroplastik yang tertahan di insang dan sedikit yang dapat dibawa menuju labial palp . Partikel yang tidak ditelan akan digumpalkan oleh mukosa dan didepositkan ke tempat spesifik di bagian mantel lalu ditransfer oleh silia untuk dikeluarkan melalui sipon pembuangan (Garrido et al ., 2012) Bentuk mikroplastik yang ditemukan di seluruh jaringan tubuh P. viridis Teluk Lampung yaitu fiber, fragmen, dan bead (Gambar 5), sedangkan bentuk mikroplastik yang berasal dari insang dan organ pencernaan terpisah kerang P. viridis hanya fiber dan fragmen (Gambar 3). Fragmen banyak ditemukan pada 30 jaringan tubuh utuh dengan nilai persentase 55% (n= 31 partikel). Organ insang lebih  banyak  ditemukan  mikroplastik  dengan  bentuk  fiber  dengan  nilai  persentase  57%  (n=  26 partikel) dibandingkan bentuk fragmen  43% (n= 19 partikel), sedangkan organ pencernaan lebih didominasi bentuk fragmen dengan nilai persentase 81% (n= 11partikel) dibandingkan bentuk fiber 19% (n= 3 partikel) dengan p<0,05.
Gambar 2. Total mikroplastik pada P. viridis. Keterangan: IG=Insang; OP=organ Pencernaan
Warna  mikroplastik  yang  ditemukan  baik  pada  jaringan  utuh,  insang  maupun  organ pencernaan didominasi oleh mikroplastik berwarna biru dengan nilai persentase 36% (n= 20 partikel); 35% (n= 14 partikel); dan 46% (n= partikel 9)(Gambar 4A). Penelitian ini membagi ukuran mikroplastik menjadi 6 katagori mengacu pada Barboza et al . (2018) yaitu <100; 101-150; 151-500; 501-1500; 1501 -3000; dan 3001-5000 µm. Ukuran mikroplastik yang ditemukan di jaringan utuh, insang dan organ pencernaan P. viridis Teluk Lampung didominasi dengan ukuran <100 µm dengan nilai persentase secara berurutan 41% (n= 23 partikel) ; 35% (n= 15 partikel); 46% (n= 6 partikel) (Gambar 4B) dengan ukuran terkecil 18 µm dan yang paling besar berukuran 2076,9 µm.
Fiber maupun fragmen merupakan produk sekunder dari degradasi makroplastik, keduanya banyak ditemukan pada perairan yang  banyak dihuni penduduk  (Li et al. , 2021). Fiber  diketahui dapat bersumber dari tali rafia atau tali yang digunakan untuk kegiatan perikanan,  seperti jaring ikan, tali pancing, juga dapat dihasilkan dari sisa pencucian pakaian (poliester) penduduk yang ikut mengalir ke perairan (GESAMP, 2016). Mikroplastik fragmen yang ada di perairan merupakan hasil dari makroplastik yang terfregmentasi, banyak menemukan fragmen berpolimer polietilen, dimana bahan ini merupakan bahan penyusun utama kantong plastik dan botol plastik (Egger et al ., 2020). Oleh  sebab  itu  sangat wajar  apabila P.  viridis hijau  didominasi  oleh  mikroplastik  bentuk  fragmen, karena lokasi tersebut sangat banyak menggunakan kantong plastik, drum plastik, dan botol plastik yang mengapung. Kehadiran mikroplastik pada perairan juga dapat dipengaruhi oleh penempelan mikroorganisme atau agregrat di mikroplastik, hal ini menyebabkan adanya preferensi mikroplastik dengan agregat yang lebih banyak ditelan oleh kerang (Kooi et al ., 2017).
Gambar 3 . Persentase bentuk mikroplastik (IG: Insang; OP: organ Pencernaan)
Gambar 4 . Persentase komposisi warna (A) dan ukuran (B) mikroplastik P. viridis Teluk Lampung Keterangan: P.vir= P. viridis; IG= Insang; Op= Organ Pencernaan
Gambar 5. Mikroplastik pada P. viridis Teluk Lampung Keterangan : P.vir= P. viridis ; IG= Insang; Op= Organ Pencernaan
Proses  degradasi  pada  mikroplastik  juga  menjadi  salah  satu  faktor  meningkatnya kelimpahan  mikroplastik  dengan  ukuran  yang  lebih  kecil  (Wagner  &  Lambert,  2018).  Proses degradasi akan terjadi apabila terdapat beberapa faktor yang mempengaruhi seperti pengaruh dari penyinaran matahari, degradasi akibat suhu, pH, akibat kondisi hidrodinamika, serta oleh agen biodegradasi yang menempel di mikroplastik tersebut (Crawford & Quinn 2017; Gong et al., 2018). Ukuran mikroplastik <100 µm dapat memberikan ancaman bagi kehidupan organisme laut, sebab ukuran ini merupakan ukuran yang mudah untuk tertelan, terutama pada organisme sesil seperti kerang-kerangan (Browne et al., 2008). Kerang mampu menelan mikroplastik pada ukuran <1500 µm (De Witte et al ., 2014). Mikroplastik pada awalnya akan menempel dan dibawa oleh silia yang ada pada  insang,  kemudian  diarahkan  menuju  ke  labial  palp  untuk  diseleksi.  Partikel  terseleksi  akan ditransfer  ke  sistem  organ  pencernaan,  sedangkan  yang  tidak  akan  dibuang  dalam  bentuk pseudofeces kembali ke lingkungan (Gosling, 2015). Penelitian ini menemukan ukuran mikroplastik yang cukup besar untuk tertelan oleh P. viridis (1501-3000 µm), dipastikan mikroplastik tersebut tidak tertelan namun hanya menempel pada permukaan tubuh kerang atau menempel pada insang kerang. Kedua kerang dengan kedalaman yang berbeda lebih banyak menangkap mikroplastik bentuk fragmen dengan ukuran didominasi <100 µm. Hal ini menunjukkan bahwa kebiasaan makan kerang yang hidup pada kedalaman yang berbeda tetap akan menyaring partikel yang relatif lebih kecil dan sesuai dengan kelimpahan mikroplastik diperairannya.
Mikroplastik  yang  didominasi  berwarna  biru  mungkin  dihasilkan  dari  masukan  sampah masyarakat  pesisir  juga  dari  alat  pembesaran  kerang  metode  rawai  panjang  yang  banyak menggunakan botol plastik, beberapa tali rafia berwarna biru, juga menggunakan beberapa drum HDPE biru sebagai pengapung. Selain itu, bead yang ditemukan juga berwarna biru, microbead ini berkarakter  hampir  sama  dengan microbead yang  ditemukan  pada  penelitian  Cheung  &  Fok (2016), microbead yang  ditemukan  juga  berwarna  biru, microbead tersebut  merupakan  jenis mikroplastik primer yang dapat ditemukan dari produk perawatan diri atau kosmetik yang berasal dari buangan dan aliran sungai daerah pemukiman.
Mikroplastik  fiber  yang  banyak  ditemukan  pada  insang  kerang  hijau  diduga  dapat disebabkan oleh banyaknya mukosa insang yang melapisi fiber tersebut sebelum dibawa menuju labial palp, namun pada penelitian Woods et al. (2018) mengatakan bahwa proses depurasi dapat membantu menurunkan konsentrasi fiber di insang sehingga laju filtrasi dapat kembali meningkat. Mikroplastik fiber dengan ukuran 450 µm dan mikroplastik butiran ukuran 250 µm yang ditemukan pada insang M. edulis memiliki efek yang sama yaitu dapat menurunkan laju filtrasi sebanyak 50% dari keadaan normal (Woods et al ., 2018). Ward et al. (2019a) mengatakan bahwa kerang M. edulis lebih banyak menelan microfiber, dibandingkan microbead yang panjangnya sama (> 1000 µm), microfiber yang tertelan pada akhirnya akan terjerat pada organ pencernaan dan membutuhkan waktu eksresi dan retensi yang lama.
Fragmen (OP) Fiber (IG) Fiber (IG) Bead (P. vir)

## KESIMPULAN
Penelitian  ini  membuktikan  bahwa  kerang  hijau  Teluk  Lampung  yang  dibesarkan  dekat dengan  pemukiman  penduduk  dan  banyak  menggunakan  alat  berbahan  plastik  dapat mengakumulasi  mikroplastik,  dengan  bentuk  yang  paling  banyak  ditemukan  fragmen  dan  fiber, juga didominasi warna biru dan ukuran <100 µm. Kelimpahan mikroplastik paling banyak ditemukan di  Insang  dibandingkan  organ  pencernaan.  Penelitian  ini  masih  belum  menjelaskan  secara  rinci mengenai pengaruh karakteristik mikroplastik dan zat aditifnya terhadap kesehatan kerang hijau, untuk  itu  diperlukan  kajian  mendalam  mengenai  efek  efek  yang  ditimbulkan  dari  mikroplastik dengan karakteristik yang berbeda pada kesehatan kerang hijau Teluk Lampung.

## DAFTAR PUSTAKA
Anastasopoulou,  A.,  &  Fortibuoni,  T.  (2019).  Impact  of  Plastic  Pollution  on  Marine  Life  in  the Mediterranean Sea. The Handbook of Environmental Chemistry . 1-62. doi: 10.1007/698_2019_421 Athey,  S.N.,  Albotra,  S.D.,  Gordon,  C.A.,  Monteleone,  B.,  Seaton,  P.,  Andrady,  A.  &  Brander,  S.M. (2020). Trophic transfer of microplastics in an estuarine food chain and the effects of a sorbed legacy pollutant. Limnology and Oceanography Letters , 5(1), 154 – 162. doi: 10.1002/lol2.10130 Baechler,  B.R.,  Stienbarger,  C.D.,  Horn,  D.A.,  Joseph,  J.,  Taylor,  A.R.,  Granek,  E.F.,  &  Brander,  S.M.
(2019). Microplastic occurrence and effects in commercially harvested North American finfish and shellfish: Current knowledge and future directions. Limnology and Oceanography Letters . 5(1), 113-136. doi: 10.1002/lol2.10122
Barboza,  L.G.A.,  Dick  Vethaak,  A.,  Lavorante,  B.R.B.O.,  Lundebye,  A.K.,  &  Guilhermino,  L.  (2018).
Marine microplastic debris: An emerging issue for food security, food safety and human health.
Marine Pollution Bulletin, 133, 336 – 348. doi: 10.1016/j.marpolbul.2018.05.047
Browne,  M.A.,  Dissanayake,  A.,  Galloway,  T.S.,  Lowe,  D.M.,  &  Thompson,  R.C.  (2008).  Ingested microscopic  plastic  translocates  to  the  circulatory  system  of  the  mussel,  Mytilus  edulis  (L.).
Environmental Science and Technology , 42(13), 5026 – 5031. doi: 10.1021/es800249a Cheung, P.K., & Fok, L. (2016). Evidence of microbeads from personal care product contaminating the sea. Marine Pollution Bulletin , 109(1), 582 – 585. doi: 10.1016/j.marpolbul.2016.05.046 Costa,  E.,  Piazza,  V.,  Lavorano,  S.,  Faimali,  M.,  Garaventa,  F.,  &  Gambardella,  C.  (2020).  Trophic Transfer  of  Microplastics  From  Copepods  to  Jellyfish  in  the  Marine  Environment. Frontiers  in Environmental Science , 8, 158. doi: 10.3389/fenvs.2020.571732
Crawford,  C.B.,  &  Quinn,  B.  (2017).  Physiochemical  properties  and  degradation. Microplastic Pollutants . pp57-100. doi: 10.1016/b978-0-12-809406-8.00004-9
De Witte, B., Devriese, L., Bekaert, K., Hoffman, S., Vandermeersch, G., Cooreman, K., & Robbens, J. (2014). Quality assessment of the blue mussel (Mytilus edulis): Comparison between commercial and wild types. Marine Pollution Bulletin , 85(1), 146 – 155. doi: 10.1016/j.marpolbul.2014.06.006 Dehaut, A., Cassone, A.L., Frère, L., Hermabessiere, L., Himber, C., Rinnert, E., Rivière, G., Lambert, C., Soudant,  P.,  Huvet,  A.,  Duflos,  G.,  &  Paul-Pont,  I.  (2016).  Microplastics  in  seafood:  Benchmark protocol  for  their  extraction  and  characterization. Environmental  Pollution ,  215,  223 – 233.  doi: 10.1016/j.envpol.2016.05.018
De-la  -Torre,  G.E.  (2019).  Microplastics:  an  emerging  threat  to  food  security  and  human  health. Journal of Food Science and Technology. doi:10.1007/s13197-019-04138-1 DLH Provinsi
Lampung. (2020). Unpublished data. Dalam: Mongebay. https://www.mongabay.co.id/2020/12/09/sampah-sumber-segala-masalah-lingkungan-di- teluk-lampung/. Diakses 5 Juli 2021
Egger,  M.,  Sulu-Gambari,  F.,  &  Lebreton,  L.  (2020).  First  evidence  of  plastic  fallout  from  the  North Pacific Garbage Patch. Scientific Reports , 10(1), 1 – 10. doi: 10.1038/s41598-020-64465-8 Fachruddin,  L.,  Khusnul,  Y.,  &  Reski,  Iin.  (2021).  Perbandingan  dua  metode  analisis  konsentrasi mikroplastik pada kerang hijau, Perna viridis dan penerapannya dalam kajian ekotoksikologi. Jurnal Pengelolaan Perairan 3(1), 1-13. Fathoniah, I., & Patria, M. P. (2021). Abundance of microplastic in green mussel Perna viridis, water, and  sediment  in  Kamal  Muara,  Jakarta  Bay. Journal  of  Physics: Conference  Series ,  1725(1),
p012042. doi: 10.1088/1742-6596/1725/1/012042
Garrido, M.V., O.R., Chaparro, R.J., Thompson, O., Garrido, & J.M., Navarro.  (2012). Particle sorting and  formation  and  elimination  of  pseudofeces  in  the  bivalves  Mulina  edulis  (siphonate)  and Mytilus chilensis (asiphonate). Marine Biology, 159: 987 – 1000. doi: 10.1007/s00227-012-1879-8 GESAMP. (2016). Sources, fate and effects of microplastics in the marine environment: part 2 of a global  assessment.  (IMO,  FAO/UNESCO-IOC/UNIDO/WMO/IAEA/UN/UNEP/UNDP).  In:  Kershaw, P.J. (Ed.), Rep. Stud. GESAMP No. 90 (96 pp). Reports and Studies GESAMP, No. 93, 96 P., 93.
GESAMP. (2019). Guidelines for the monitoring and assessment of plastic litter in the ocean. Reports and  Studies  GESAMP,  No  99,  130.  http://www.gesamp.org/publications/guidelines-for-the- monitoring-and-assessment-of-plastic-litter-in-the-ocean
Gong, J., Kong, T., Li, Y., Li, Q., Li, Z., & Zhang, J. (2018). Biodegradation of microplastic derived from poly(ethylene terephthalate) with bacterial whole-cell biocatalysts. Polymers , 10(12), 1326. doi: 10.3390/polym10121326
Gosling, E. (2015). Marine Bivalve Molluscs. John Wiley & Sons. doi: 10.1002/9781119045212 Hannah,  R.,  &  Max,  R.  (2018).  Plastic  Pollution.  Published  online  pada  OurWorldInData.org. https://ourworldindata.org/plastic-pollution. Diakses 29 Nopember 2021
Honingh, D., van Emmerik, T., Uijttewaal, W., Kardhana, H., Hoes, O., & van de Giesen, N. (2020). Urban River Water Level Increase Through Plastic Waste Accumulation at a Rack Structure. Frontiers in Earth Science , 8(2020), 28p. doi: 10.3389/feart.2020.00028
Jambeck, J.R., Ji, Q., Zhang, Y.G., Liu, D., Grossnickle, D.M., & Luo, Z.X.  (2015). Plastic waste inputs from land into the ocean. Science (80), 347(6223):764 – 768. doi: 10.1126/science.1260879.
Kooi, M., Van Nes, E.H., Scheffer, M., & Koelmans, A.A. (2017). Ups and Downs in the Ocean: Effects of  Biofouling  on  Vertical  Transport  of  Microplastics. Environmental  Science  and  Technology , 51(14): 7963 – 7971. doi: 10.1021/acs.est.6b04702
Li, J., Qu, X., Su, L., Zhang, W., Yang, D., Kolandhasamy, P., Li, D., & Shi,  H.  (2016). Microplastics in mussels  along  the  coastal  waters  of  China. Environmental  Pollution ,  214:177 – 184.  doi: 10.1016/j.envpol.2016.04.012
Li, Y., Zhang, Y., Chen, G., Xu, K., Gong, H., Huang, K., Yan, M., & Wang, J.  (2021). Microplastics in surface waters and sediments from Guangdong coastal areas, South China. Sustainability, 13(5):
1 – 15. doi: 10.3390/su13052691 Lusher, A. (2015). Marine anthropogenic litter-Chapter 10 : Microplastics in the Marine Environment: Distribution, Interactions and Effects. Marine Anthropogenic Litter . doi: 10.1007/978-3-319-16510-3 Lusher, A.L., Hollman, P.C.H., & Mendoza-Hill, J.J. (2017). Microplastics in fisheries and aquaculture: status  of  knowledge  on  their  occurrence  and  implications  for  aquatic  organisms  and  food safety. FAO, Rome. https://www.fao.org/3/i7677en/I7677EN.pdf Madeppungeng, E.R., M., P. Patria, & A., Suryanda. (2021). Analysis location of microplastics in green mussel's Perna viridis Gills (Linnaeus, 1758). IOP Conf. Series: Materials Science and Engineering . 1098, 05205. doi: 10.1088/1757-899X/1098/5/052050
Nelms, S.E., Tamara, S.G., Brendan, J.G., & Penelope, K.L.  (2018). Investigating microplastic trophic transfer  in  marine  top  predators. Environmental  Pollution, 238,  999-1007. doi: 10.1016/j.envpol.2018.02.016
Patterson, J., Jeyasanta, K.I., Laju, R.L., & Edward, J.K.P. (2021). Microplastic contamination in Indian edible mussels (Perna perna and Perna viridis) and their environs. Marine Pollution Bulletin , 171, 112678. doi: 10.1016/j.marpolbul.2021.1126
Ramli, Yaqin, K., & Rukminasari, N. (2021). Kontaminasi mikroplastik pada kerang hijau Perna viridis di Perairan  Pangkajene  Kepulauan,  Sulawesi  Selatan,  Indonesia.  Akuatikisle: Jurnal  Akuakultur, Pesisir Dan Pulau-Pulau Kecil , 5(1), 1 – 5. doi: 10.29239/j.akuatikisle.5.1.1-5
Riisgård, H.U., Egede, P.P., & Barreiro Saavedra, I.  (2011). Feeding behaviour of the mussel, Mytilus edulis: new observations, with a mini review of current knowledge. Journal of Marine Biology , 312459, 13. doi: 10.1155/2011/312459
Riisgård, H.U., Finch, P. & Larsen, P.S. (2014). The mussel filter-pump – present understanding, with a re- examination of gill preparations. Acta Zoologica . 96(3), 273-282. doi: 10.1111/azo.12110 Rochman, C.M., Tahir, A., Williams, S.L., Baxa, D.V., Lam, R., Miller, J.T., Teh, F.-C., Werorilangi, S., & Teh, S.J.,  (2015) .  Anthropogenic debris in seafood: plastic debris and ﬁbers from textiles in ﬁsh and bivalves sold for human consumption. Scientific Reports, 5, 14340.  doi: 10.1038/srep14340.
Rosa,  M.,  Ward,  J.E.,  &  Shumway,  S.E.  (2018).  Selective  capture  and  ingestion  of  particles  by suspension-feeding  bivalve  molluscs:  A  review. Journal  of  Shellfish  Research .  37:  727 – 746.  doi: 10.2983/035.037.0405 .
Setälä, O., Norkko, J., & Lehtiniemi, M. (2016). Feeding type affects microplastic ingestion in a coastal invertebrate community. Marine Pollution Bulletin , 102(1), 95 – 101. doi:
10.1016/j.marpolbul.2015.11.0
Sharma, S., & Chatterjee, S. (2017). Microplastic pollution, a threat to marine ecosystem and human health:  a  short  review. Environmental  Science  and  Pollution  Research, 24,  21530 – 21547.  doi: 10.1007/s11356-017-9910-8
Smith,  M.,  Love,  D.C.,  Rochman,  C.M.,  &  Neff,  R.A.  (2018).  Microplastics  in  Seafood  and  the Implications for Human Health . Current Environmental Health Reports . doi: 10.1007/s40572-018- 0206-z
Song, Y.K., Sang, H.H., Soeun, E., Mi, J., Gi, M.H., Atsuhiko, I., & Won, J.S. (2018). Horizontal and vertical distribution of microplastics in Korean coastal waters. Environmental Science & Technology, 52
(21), 12188-12197 . doi: 10.1021/acs.est.8b04032
Teuten, E.L., Saquing, J.M., Knappe, D.R.U., Barlaz, M.A., Jonsson, S., Bjorn, A., & Takada, H.  (2009). Transport and release of chemicals from plastics to the environment and to wildlife. Philosophical Transactions  of  the  Royal  Society  B:  Biological  Sciences ,  364(1526),  2027 – 2045.  doi:
10.1098/rstb.2008.0284
Thiele, C.J., Hudson, M.D., & Russell, A.E. (2019). Evaluation of existing methods to extract microplastics from bivalve tissue: Adapted KOH digestion protocol improves filtration at single-digit pore size.
Marine Pollution Bulletin , 142, 384 – 393. doi: 10.1016/j.marpolbul.2019.03.0 Thushari, G.G.N., & Senevirathna, J.D.M. (2020). Plastic pollution in the marine environment. Heliyon , 6(8), e04709. doi: 10.1016/j.heliyon.2020.e04709
Van  Cauwenberghe,  L.,  &  Janssen,  C.R.  (2014).  Microplastics  in  bivalves  cultured  for  human consumption. Environmental Pollution , 193, 65 – 70. doi: 10.1016/j.envpol.2014.06.010 Wagner, M., & Lambert, S. 2018. Freshwater Microplastics - The Handbook of Environmental Chemistry 58, 302. doi: 10.1007/978-3-319-61615-5
Walkinshaw,  C.,  Lindeque,  P.K.,  Thompson,  R.,  Tolhurst,  T.,  &  Cole,  M.  (2020).  Microplastics  and seafood:  lower  trophic  organisms  at  highest  risk  of  contamination. Ecotoxicology  and Environmental Safety , 190, 110066. doi: 10.1016/j.ecoenv.2019.110066
Ward, J.E., Jennifer, W., Shiye, Z., Bridget, A.H., & Sandra, E.S. (2019a). Selective Ingestion and Egestion of Plastic Particles by the Blue Mussel (Mytilus edulis) and Eastern Oyster (Crassostrea virginica): Implications for Using Bivalves as Bioindicators of Microplastic Pollution. Environmental Science & Technology, 53, 8776 −8784. doi: 10.1021/acs.est.9b02073
Ward, J.E., Rosa, M., & Shumway, S.E. (2019b). Capture, ingestion, and egestion of microplastics by suspension-feeding  bivalves:  a  40-year  history. Anthropocene  Coasts ,  2(1),  39 – 49.  doi: 10.1139/anc-2018-0027
Woods, M.N., Stack, M.E., Fields, D.M.,  Shaw, S.D., &  Matrai, P.A.  (2018). Microplastic fiber uptake, ingestion, and egestion rates in the blue mussel ( Mytilus edulis ). Marine Pollution Bulletin , 137, 638 – 645. doi: 10.1016/j.marpolbul.2018.10.061