## PEMANFAATAN BAKTERI ANTAGONIS TERHADAP PENGENDALIAN JAMUR PATOGEN
Fusarium oxysporum dan Phytopthora capsici SECARA IN VITRO
Tri Saptari Haryani 1) , dan Olivia Mersylia Tombe 2)
1,2) Program Studi Biologi – FMIPA Universitas Pakuan

## ABSTRAK
Jamur Fusarium  oxysporum merupakan  patogen  yang  dapat  menyebabkan  penyakit busuk  batang  pada  tanaman  vanili.  Adanya  pembusukan  pada  jaringan  batang  tersebut merupakan  ciri  khas  dari  penyakit  busuk  batang.  Gejala  khas  dari  serangan  patogen  pada pangkal  batang  mengakibatkan  pangkal  batang  menjadi  berwarna  hitam. Salah  satu  cara untuk  mengendalikannya  yaitu  menggunakan  agen  pengendali  hayati  berupa  bakteri antagonis. Tujuan dari penelitian ini untuk mendapatkan satu isolat bakteri antagonis yang paling  efektif  menekan  pertumbuhan  koloni  serta  perkecambahan  konidia  dan  zoospora patogen Fusarium  oxysporum dan Phytopthora  capsici. Penelitian  dilakukan  secara in  vitro, tahapan kegiatan dalam penelitian ini meliputi sterilisasi alat, pembuatan media, pembuatan inokulum,  pengujian  antagonis  isolat  bakteri  dan  filtratnya  serta  pengamatannya.  Bahan yang  digunakan  adalah  isolat F.oxysporum , P.capsici dan  sembilan  isolat  bakteri.  Hasil penelitian  menunjukkan  bahwa  dari  sembilan  isolat  bakteri  terdapat  satu  isolat  bakteri paling  efektif  menghambat  pertumbuhan  patogen F.oxysporum yaitu  isolat  bakteri  AKT7 sebesar  29,91%  sedang  isolat  bakteri  paling  efektif  menghambat  patogen P.capsici yaitu isolat  bakteri  B5A  sebesar  54,42%  .  Filtrat  bakteri  AKT7  mampu  menghambat perkecambahan konidia F.oxysporum dan zoospora P.capsici .
Kata kunci : Fusarium oxysporum , Phytopthora capsici , bakteri antagonis

## PENDAHULUAN
Pada  perkembangan  dunia  pertanian tidak  pernah  lepas  dari  masalah  hama dan penyakit tanaman.  Hama dan penyakit tanaman mengakibatkan menurunnya kualitas dan kuantitas hasil yang diperoleh. Beberapa  jenis  diantaranya  memiliki  daya merusak  yang  sangat  merugikan  dan  dapat mengakibatkan  kematian  ribuan  hektar tanaman, sehingga berdampak pada bencana  kelaparan.  Salah  satu  cara  untuk mengendalikan organisme pengganggu tanaman  yaitu  dengan  menggunakan  agen pengendali hayati.
Jamur Fusarium
oxysporum merupakan patogen yang dapat menyebabkan  penyakit  busuk  batang  pada tanaman vanili. Gejala busuk batang vanili dapat  ditemukan  pada  seluruh  bagian tanaman  yaitu  batang,  buah,  pucuk  dan kadang-kadang  pada  daun.  Tetapi  gejala busuk batang vanili paling sering
ditemukan  pada  batang.  Bagian  batang yang terserang akan mengakibatkan jaringan  batang  tersebut  busuk.  Adanya pembusukan  pada  jaringan  batang  tersebut merupakan  ciri  khas  dari  penyakit  busuk batang (Tombe dkk , 1998).
Fusarium  oxysporum mempunyai miselium yang bersekat, bercabang dengan membentuk  konidiofor.  Miselium  tampak seperti  kapas  dan  menghasilkan  pigmen berwarna  kuning,  merah  muda,  atau keunguan bila dilihat secara makroskopis.
Untung  (1992)  melaporkan  bahwa penyakit  Busuk  Batang  Vanili  telah ditemukan  di  semua  propinsi  penghasil utama vanili antara lain Jawa Tengah, Bali, Sumatera Utara, Sulawesi Utara,  Lampung dan  NTT  dengan  intensitas  serangan 5-80%. Bila  dihitung  rata-rata  kerugian yang  ditimbulkan  oleh  penyakit  busuk batang hingga tahun ± 90an sebanyak 10%
yang  dapat  mencapai  nilai  Rp.  32 miliar/tahun (Untung, 1992).
Jamur Phythophtora
capsici merupakan patogen  yang dapat menyerang seluruh bagian tanaman lada, tapi serangan yang  paling  membahayakan  adalah  pada akar  atau  pangkal  tanaman  dalam  waktu singkat. Gejala awal serangan patogen pada akar  atau  pangkal  batang  sulit  diketahui. Gejala  yang  nampak  berupa  kelayuan tanaman,  merupakan  serangan  lanjut  yang sering kali tidak dapat dikendalikan. Gejala khas  dari  serangan  patogen  pada  pangkal batang  mengakibatkan  pangkal  batang menjadi  berwarna  hitam.  Pada  keadaan yang lembab, gejala hitam tersebut nampak seperti lendir berwarna agak biru.
Salah satu cara untuk mengendalikan  jamur  patogen Fusarium oxysporum dan Phytopthora  capsici yaitu menggunakan  agen  pengendali  hayati berupa bakteri antagonis. Bakteri antagonis merupakan  salah  satu agen  pengendali hayati  yang  menghasilkan  suatu  senyawa yang dapat digunakan untuk mengendalikan  jamur-jamur  patogen  yang menyebabkan  penyakit  pada  tumbuhan. Penggunaan  agen  hayati  menjadi  alternatif yang  tepat  untuk  mengendalikan  patogen penyebab penyakit pada tanaman. Phytophthora berasal  dari  bahasa  Yunani, phyto yang  berarti  tanaman  dan phthora yang  artinya  merusak,  jamur  ini  disebut juga  jamur  air  karena  selain  di  tanah  dan daerah daun sebagian besar siklus hidupnya  dapat  terjadi  di  air  (Erwin  and Ribeiro, 1996). Phytophthora yang ditumbuhkan  pada  media  biakan  atau jaringan  tanaman  dalam  keadaan  lembab umumnya  tidak  berpigmen,  dan  apabila dilihat  di  bawah  mikroskop,  miseliumnya berwarna  transparan.  Miselium  bercabang dan  memiliki  struktur  seperti  tabung. Pertumbuhan  umumnya  terjadi  pada  ujung hifa (Erwin and Ribeiro, 1996).

## Tujuan Penelitian
Penelitian  ini  bertujuan  untuk mendapatkan  satu  isolat  bakteri  antagonis
yang  paling  efektif  menekan  pertumbuhan koloni  serta  perkecambahan  konidia  dan zoospora    patogen Fusarium  oxysporum dan Phytopthora capsici .

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  telah  dilaksanakan  pada bulan  Maret  2010  sampai  dengan  April 2010 di Balai Penelitian Tanaman Obat dan Aromatik  (BALITTRO),  Jalan  Tentara Pelajar No. 3A, Bogor
Alat dan Bahan Alat yang digunakan dalam penelitian ini antara lain : petri disk, tabung reaksi, jarum ose, pipet, autoclave, miliphore, clean bench, steamboat, erlenmeyer,  cork  borer,  mikroskop,  oven, centrifuse, timbangan, gelas ukur, alumunium  foil,  karet  gelang,  kapas  dan spidol.

## Bahan Penelitian
Bahan  yang  dipergunakan  dalam peneliian  ini  antara  lain  :  media Potatoes Dextrose  Agar (PDA),  media Nutrient Agar (NA) Potatoes Dextrose Broth (PDB) Trypticasein  Soy Broth (TSB),  V 8 juice, aquadest, isolat Phytophtora capsici , isolat Fusarium  oxysporum ,  air  steril,  alkohol, pewarna laktofenol, 9 isolat bakteri.

## Metode Penelitian Sterilisasi
Alat-alat  yang  digunakan  meliputi cawan petri, pipet, dan corkborer disterilisasi  dengan  menggunakan  oven pada  suhu  150°C  selama  3  –  5  jam. Sebelumnya  cawan  petri,  erlenmeyer    dan corkborer dibungkus dengan menggunakan kertas koran/alumunium foil untuk mencegah terjadinya kontaminasi.

## Pembuatan media
Media  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  PDA,  PDB  dan  agar V 8 untuk  pertumbuhan  jamur  patogen  dan NA,  TSB  untuk  pertumbuhan  bakteri. Media  NA,  PDB,  PDA  dan  TSB menggunakan media yang siap pakai. Cara
pembuatannya  yaitu  media  NA  diambil sebanyak  23  gr/l,  PDB  sebanyak  24  gr/l, PDA  sebanyak  39  gr/l,  dan  TSB  sebanyak 17gr/l.  Bahan-bahan  tersebut  dimasukkan ke  dalam  tabung  erlenmeyer  kemudian ditambahkan  aquadest.  Setelah  bahan- bahan tersebut tercampur, kemudian disterilkan  dalam  autoclave  pada  suhu 121°C  tekanan  1  atm  selama  20  menit. Sedangkan  media  V 8 juice  merupakan media yang terdiri dari 200 ml V 8 juice, 12 gram  agar,  1  gram  CaCO 3 dan  aquadest 800 ml. Cara pembuatannya  yaitu V 8 juice disaring  kemudian  dicampurkan  dengan agar dan CaCO 3 , dipanaskan sampai semua bahan  larut.  Media  tersebut  disterilkan dalam  autoclave  pada  suhu  121 0 C  selama 20 menit.
Menumbuhkan isolat jamur patogen dan bakteri
Teknik dalam peremajaan P.capsici
dan F.oxysporum adalah dengan mengambil  potongan  biakan  jamur  dalam tabung  reaksi  kemudian  memindahkannya ke  permukaan  media  PDA  baru  dalam cawan petri. Sedangkan untuk isolat bakteri yaitu  dengan  menggunakan  jarum  ose isolat bakteri digores pada media NA yang baru.  Perlakuan  ini  dilakukan  di  dalam Laminar  Air  Flow  Cabinet agar  tidak terjadi kontaminasi

## Isolasi bakteri dari 3 macam formula
Cara  kerja  yang  dilakukan  dalam mengisolasi  bakteri  dari  3  macam  formula A,B,C adalah dengan pengenceran
bertingkat.  Formula  yang  akan  diteliti diambil masing-masing 10 ml dan dimasukkan  ke  dalam  3  erlemeyer  yang telah berisi air steril masing-masing 90 ml. Setelah formula dan air steril dicampurkan dikocok  di  atas  sheaker  selama  15  menit dengan  tujuan  agar  produk  dan  air  steril serta  bakteri  di  dalam  formula  dapat tercampur  dengan  sempurna.  Dari  masing- masing  formula  dilakukan  pengenceran bertingkat. Untuk setiap formula disiapkan masing-masing  4  tabung  reaksi  berisi  air steril  sebanyak  9  ml.  Kemudian  dilakukan pengenceran  bertingkat.  Dari  produk  A diambil 1 ml lalu dimasukkan pada tabung reaksi yang pertama disheaker sebentar lalu diberi  nama  A 1 ,  kemudian  dari  A 1 diambil kembali  1  ml  dan  dituangkan  ke  dalam tabung  reaksi  selanjutnya    disheaker sebentar  dan  diberi  nama  A 2 ,  dari  A 2 diambil  kembali  1  ml  dan  dimasukkan  ke test  cube  selanjutnya  lalu  disheaker sebentar  dan  diberi  nama  A 3 ,  dari  A 3 diambil  kembali  1  ml  dan  dimasukkan  ke dalam  test  cube  selanjutnya  disheaker sebentar  dan  diberi  nama  A 4 .  Dari  A 3 dan A 4 masing-masing  diambil  0,5  ml  dan dituangkan  ke  dalam  media  PDA  yang telah disiapkan, semua dilakukan sebanyak 3  kali  pengulangan  (Gambar  1).  Begitu juga  untuk  formula  B  dan  C.  Setelah selesai maka semua petri yang berisi media disimpan  di  dalam  kantong  plastik  dan diinkubasi dalam kondisi suhu kamar.
Gambar 1 . Metode Isolasi Bakteri
0,5 ml
10 ml 1 ml 1 ml 1 ml 0,5 ml mlmlml ml 0,5 ml 90 m 9 ml 9 ml 9 ml
Formula
Uji antagonis bakteri terhadap pertumbuhan koloni Fusarium oxysporum dan Phytophtora capsici Bakteri-bakteri  yang  digunakan untuk  uji  antagonis  yaitu  bakteri  terbaik hasil  isolasi  formula  dan  bakteri  koleksi BALITTRO  (tabel  1).  Bakteri  yang  telah diisolasi  diuji  kemampuan  antagonisnya terhadap 2 jamur patogen yaitu F.oxysporum dan P.capsici .
Satu  koloni  bakteri  yang  tumbuh terpisah  pada  media  NA  di  cawan  petri, diambil  menggunakan  jarum  ose  dan digoreskan  pada  media  PDA  yang  telah disiapkan.  Pengujian  antagonis  bakteri terhadap dua jamur patogen tersebut secara in  vitro dilakukan  dengan  metode  uji berpasangan  pada  media  agar.  Potongan biakan F.oxysporum atau  isolat P.capsici (diameter  0,5  cm)  diletakkan  dengan  jarak 5  cm  dari  goresan  bakteri  di  media  PDA (Gambar  2).  Pengamatan  dilakukan  setiap hari  terhadap  koloni  jamur  dengan  cara mengukur  jari-jari  koloni  jamur  yang mengarah ke goresan bakteri.
Gambar 2. Metode Uji Antagonis
Tabel 1. Asal Isolat Bakteri
Kode Bakteri Potensial Asal Isolat Sk 1 Rizosfera Tanaman Lada Muda Sukamulya St 116 Rizosfera Tanaman Lada Tua Sukamulya OG 1 Rizosfera Tanaman Lada Tua Lampung Utara J 2 Rizosfera Tanaman Jagung AKT 7 Rizosfera Tanaman Nilam
PS 4 Rizosfera Tanaman Nilam B5 A Formula A B6 B Formula B B10 B Formula B
Uji filtrat bakteri terhadap per- kecambahan konidia
Fusarium oxysporum dan  zoospora Phytophtora capsici
Untuk  pengujian  filtrat  isolat  yang akan digunakan  yaitu isolat bakteri AKT7. Metode  yang  dipakai  yaitu  pencampuran suspensi  konidia  atau  zoospora  dengan filtrat bakteri. Isolat F.oxysporum diremajakan pada media PDA dan diinkubasi  selama  5  hari.  Potongan  biakan koloni F.oxysporum sebesar  1x1  cm dimasukkan  ke  dalam  media  PDB  lalu diinkubasi  selama  4  hari  dengan  kondisi digoyang  (dishaker)  untuk  merangsang produksi  konidia F.oxysporum .  Sedangkan isolat P.capsici disiapkan  dengan  cara meletakkan  empat  potongan  biakan  jamur pada  cawan  petri  yang  telah  berisi  media agar  V 8. Inkubasi  dilakukan  selama  7  hari dengan pencahayaan terus-menerus.
Zoospora dari P.capsici dilepaskan dengan cara  memberi  air  steril  diatas  biakan tersebut, dan diinkubasi di dalam kulkas (± 16 0 C) selama 15 menit.
Filtrat  bakteri  dibuat  dengan  cara menginokulasikan bakteri ke dalam  media TSB,  inkubasi  dilakukan  dengan  digoyang (dishaker) selama 2 hari. Bakteri yang telah tumbuh  dipanen  dengan  cara  disentrifuse dengan  kecepatan  4000  rpm  selama  2x30 menit.  Filtrat  yang  dihasilkan  setelah disentrifuse, disaring menggunakan miliphore  (0,2  µm),  agar  diperoleh  filtrat bakteri yang bebas dari sel bakteri.
Suspensi  zoospora  dan  konidia kemudian  diberi  perlakuan  filtrat  bakteri dengan  konsentrasi  50%,  25%,  12,5%  dan tanpa diberi filtrat bakteri ( kontrol).
Suspensi yang telah diberi perlakuan  diinkubasi  pada  suhu  ruang selam  2,5  jam  untuk P.capsici dan  4  jam untuk F.oxysporum lalu  diberi  pewarna
Bakteri Jamur 5CM
laktofenol  dan  dilakukan  penghitungan terhadap jumlah konidia dan zoospora yang berkecambah ( Kaur, R et al , 2007)

## Rancangan  Percobaan    dan  Model Matematik
Rancangan  yang  akan  digunakan dalam  penelitian  ini  adalah  Rancangan Acak  Lengkap  dengan  perlakuan  9  jenis bakteri  antagonis  dan  ulangan  sebanyak  3 kali untuk 2 isolat patogen yang berbeda.
Menurut  Gaspersz  (1991),  model statistik untuk percobaan dengan menggunakan rancangan acak RAL adalah sebagai berikut :
Y ijk = µ + Ti + E ij Dimana : µ :  Rata-rata (nilai tengah) respon Ti:  Pengaruh perlakuan ke-i yang akan kita uji E ij :  Pengaruh faktor random yang mendapat  perlakuan ke-i dengan ulangan ke-j Y ij : Respon terhadap perlakuan ke-i pada plot ke-j
Peubah yang Diamati 1. Uji Antagonis Bakteri terhadap pertum ban  koloni Fusarium  oxysporum dan Phytophtora capsici yaitu : Panjang jari-jari koloni F.oxysporum dan P.capsici Persentase  peng-hambatan pertumbuhan  koloni F.oxysporum dan
P.capsici.
Dengan cara : % penghambatan :  a – b  x 100% a Keterangan : a  : panjang jari-jari koloni kontrol b   : panjang jari-jari koloni miselia yang tumbuh ke arah bakteri 2.  Uji filtrat bakteri terhadap perkecam- bahan konidia dan zoospora yaitu :
Jumlah konidia F.oxysporum dan zoospora P.capsici yang  berkecambah. Persentase  perkecambahan  konidia  dan zoospora, dengan cara :
%  perkecambahan :    a    x 100% b
Keterangan : a : Jumlah konidia atau zoospora yang berkecambah b : Jumlah seluruh konidia atau zoospora yang diamati

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Pengaruh  Bakteri  Antagonis  Terhadap Pertumbuhan  Jamur  Patogen Fusarium oxysporum dan Phytophthora capsici.
Pengamatan pengaruh bakteri terhadap  pertumbuhan  jamur F.oxysporum dan P.capsici dilakukan  selama  tujuh  hari. Dari data hasil pengamatan, isolat
F.oxysporum tanpa diberi perlakuan bakteri (kontrol)  dapat  tumbuh  menutupi  seluruh permukaan  cawan  petri  setelah  7  hari sedangkan  isolat P.capsici setelah  6  hari diinkubasi  (Gambar  3  dan  4).  Isolat P.capsici dapat  tumbuh  lebih  cepat dibandingkan  dengan  isolat F.oxysporum . Miselium  kedua  jamur  tersebut  tampak seperti  kapas  tipis  menutupi  permukaan media  PDA.  Warna  koloni P.capsici putih sedangkan F.oxysporum agak keunguan.
Gambar 3. Koloni F.oxysporum pada hari ke 7
Gambar 4 .  Koloni Phytophthora capsici pada hari ke 6
Delapan dari sembilan isolat bakteri yang  diuji  ternyata  dapat  menghambat pertumbuhan F.oxysporum dan P.capsici. Pengaruh isolat bakteri terhadap
pertumbuhan jari-jari koloni jamur F.oxysporum dan P.capsici secara  lengkap tersaji pada Tabel 2 dan 3.
Tabel 2. Pengaruh Beberapa Isolat Bakteri Terhadap Pertumbuhan Jamur F.oxysporum
Isolat Bakteri Rata-rata Jari-jari koloni F.oxysporum (mm) pada hari pengamatan ke.. 1 5 7 Sk 1 11,66 a 31,00 b 34,66 b St 116 11,33 a 30,66 b 35,00 b B5 A 11,66 a 30,66 b 37,33 b J 2 13,33 a 38,66 a 46,33 a OG 1 12,66 a 31,33 b 35,33 b B10B 11,66 a 34,00 b 41,33 b B6B 11,00 a 32,66 b 38,33 b PS4 12,33 a 29,33 b 32,66 b AKT7 12,33 a 29,66 b 32,00 b Kontrol 14,66 a 37,66 a 45,66 a
Keterangan  : Angka  yang  diikuti  huruf yang  sama  pada  kolom  yang  sama menunjukkan  tidak  berbeda  nyata  pada taraf 1%.
Tabel 3. Pengaruh Beberapa Isolat Bakteri Terhadap Pertumbuhan  Jamur P.capsici
Isolat Bakteri
Rata-rata Jari-jari koloni P.capsici (mm) pada hari pengamatan ke.. 1 3 6 Sk 1 18,00 a Sk 1 18,00 a St 116 17,66 a St 116 17,66 a B5 A 17,00 a B5 A 17,00 a J 2 17,66 a J 2 17,66 a OG 1 16,00 a OG 1 16,00 a B10B 18,00 a B10B 18,00 a B6B 15,33 a B6B 15,33 a PS4 16,66 a PS4 16,66 a AKT7 17,33 a AKT7 17,33 a Kontrol 18,33 a Kontrol 18,33 a
Dari  Tabel  2  dan  3  tampak  bahwa pertumbuhan  jamur  pada  kontrol  (tanpa perlakuan)  semakin  lama  waktu  inkubasi semakin besar jari-jari koloninya sedangkan pada perlakuan bakteri,
pertumbuhan jari-jari koloni isolat F.oxysporum dan
P.capsici mulai mengalami penghambatan pada hari kelima dan hari keenam.
Pada  Tabel  2  tampak  bahwa pengaruh  sembilan  isolat  bakteri  terhadap pertumbuhan F.oxysporum pada hari pertama  menunjukkan  hasil  yang  tidak berbeda  nyata  dengan  kontrol  sedangkan pada  hari  kelima  dan  ketujuh  pengaruh delapan  isolat  bakteri  menunjukkan  hasil yang berbeda nyata dengan kontrol kecuali isolat  bakteri  J2.  Hal  ini  ditunjukkan  pada perlakuan  isolat  bakteri  PS4  pada  hari kelima  dan  isolat  bakteri  AKT7  pada  hari ketujuh  yang  sangat  berpengaruh  terhadap penghambatan  pertumbuhan F.oxysporum .
Keadaan  tersebut  diduga  disebabkan  isolat bakteri  mulai  mengeluarkan  senyawa antibiotik yang dapat menghambat pertumbuhan patogen F.oxysporum . Dengan  demikian  perlakuan  menggunakan bakteri  mulai  menghambat  pertumbuhan jamur F. oxysporum pada hari kelima .
Pemberian  bakteri  menyebabkan juga  persentase  penghambatan  pertumbuh- an yang berbeda untuk patogen F.oxysporum (Tabel 4).
Tabel 4. Persentase Penghambatan Pertumbuhan Koloni Jamur
F.oxysporum Isolat Bakteri Persentase  Penghambatan (%) Sk 1 24,09 St 116 23,43 B5 A 18,24 J2 0,72 OG 1 22,62 B10 B 9,48 B6 B 16,05 PS4 28,47 AKT7 29,91
Dari  Tabel  4  tampak  bahwa persentase  penghambatan  pertumbuhan patogen F.oxysporum terbesar  29,91% yaitu pada perlakuan dengan menggunakan isolat  bakteri  AKT7,  sedangkan  persentase
penghambatan pertumbuhan patogen F.oxysporum terkecil  0,72%  yaitu  pada perlakuan  dengan  menggunakan  isolat bakteri J2. Pengaruh beberapa isolat bakteri terhadap pertumbuhan F.oxysporum selengkapnya tersaji pada Gambar 5.
Dari  Tabel  4  dan  Gambar  5  dapat dilihat  bahwa  dari  sembilan  isolat  bakteri terdapat  delapan  isolat  bakteri  yang menyebabkan  penghambatan  pertumbuhan jamur F.oxysporum sedangkan  satu  isolat bakteri  tidak  menyebabkan  penghambatan pertumbuhan  jamur F.oxysporum yaitu isolat  bakteri  J2.  Isolat  bakteri  AKT7 merupakan  isolat  bakteri  yang  paling berpengaruh  menghambat  pertumbuhan F.oxysporum dibandingkan  isolat  bakteri lainnya yaitu dengan persentase penghambatan  sebesar  29,91%  pada  hari terakhir pengamatan. Hal ini diduga karena isolat  bakteri  yang  digunakan  pada  uji  ini mengeluarkan  suatu  senyawa  antibiotik yang  dapat  menghambat  pertumbuhan F.oxysporum yang  dimulai  pada  hari kelima.
Pada  Tabel  3  tampak  bahwa pengaruh  sembilan  isolat  bakteri  terhadap pertumbuhan P.capsici pada  hari  pertama
dan  ketiga  menunjukkan  hasil  yang  tidak berbeda  nyata  dengan  kontrol  sedangkan pada  hari  keenam  pengaruh  delapan  isolat bakteri  menunjukkan  hasil  yang  tidak berbeda nyata dengan kontrol kecuali isolat bakteri  J2.  Hal  ini  ditunjukkan  pada perlakuan  isolat  bakteri  B5  A  pada  hari keenam  yang  sangat  berpengaruh  terhadap penghambatan pertumbuhan P.capsici . Hal ini  disebabkan  karena  isolat  bakteri  mulai mengeluarkan  senyawa  antibiotik  yang dapat  menghambat  pertumbuhan  patogen
P.capsici .  Dengan  demikian  perlakuan dengan menggunakan bakteri mulai menghambat  pertumbuhan P.capsici pada hari keenam.
Perlakuan  bakteri  juga  menyebab- kan persentase penghambatan pertumbuhan yang  berbeda  untuk  jamur  patogen P.capsici (Tabel 6). Tabel 6. Persentase Penghambatan Pertumbuhan Koloni Jamur P.capsici Isolat Bakteri Persentase Penghambatan (%) Sk 1 31,97 St 116 24,48 B5 A 54,42 J2 0,69 OG 1 30,61 B10 B 25,85 B6 B 27,22 PS4 33,34 AKT7 34,02
Dari  Tabel  6  tampak  bahwa persentase  penghambatan  pertumbuhan patogen P.capsici terbesar  54,42%  yaitu pada perlakuan dengan menggunakan isolat bakteri  B5  A,  sedangkan  persentase penghambatan pertumbuhan patogen
P.capsici terkecil  0,62%  yaitu  pada perlakuan  dengan  menggunakan  isolat bakteri  J2.  Gambar  pengaruh  beberapa isolat bakteri terhadap pertumbuhan
P.capsici selengkapnya tersaji pada Gambar 6.
Gambar  5. Pengaruh  Beberapa  Isolat Bakteri  Terhadap  Pertumbuhan Fusarium oxysporum pada hari ke 7
Gambar 6. Pengaruh      Beberapa     Isolat Bakteri Terhadap Pertumbuhan hytopthora capsici pada hari ke- 6
Dari  Tabel  6  dan  Gambar  6  dapat dilihat  bahwa  dari  9  isolat  bakteri terdapat 8  isolat  bakteri  yang  menyebabkan penghambatan pertumbuhan jamur P.capsici sedangkan  satu  isolat  bakteri tidak menyebabkan penghambatan pertumbuhan  jamur P.capsici yaitu  isolat bakteri  J2.  Isolat  bakteri  B5  A  merupakan isolat  bakteri  yang  paling  berpengaruh menghambat pertumbuhan P.capsici dengan  persentase  penghambatan  sebesar 54,42% pada hari terakhir pengamatan. Hal ini  diduga  karena  isolat  bakteri  yang digunakan  mengeluarkan  suatu  senyawa antibiotik yang mampu menghambat pertumbuhan  P.capsici  yang  dimulai  pada hari keenam.
Isolat  bakteri  B5  A  dan  AKT7 mampu menghambat pertumbuhan patogen P.capsici dan F.oxysporum tetapi,  bila dilihat  dari  hasil  persentasenya  (Tabel  8 dan  9)  patogen P.capsici lebih  peka  atau lebih  terhambat  pertumbuhannya  dengan menggunakan isolat bakteri B5 A dibandingkan  dengan  isolat F. oxysporum, sedangkan  isolat F.oxysporum nampaknya lebih peka atau terhambat pertumbuhannya dengan menggunakan isolat bakteri AKT7.
Menurut  Loekas  (2008),  bakteri antagonis  dapat  mengeluarkan  senyawa antibiotik  yang  bersifat  toksik  terhadap jamur  patogen.  Pada  penelitian  ini  isolat
bakteri yang mengeluarkan senyawa antibiotik yang bersifat toksik telah mampu menghambat pertumbuhan jamur F.oxysporum dan P.capsici. Dari  hasil pengamatan  pada  hari  terakhir  ternyata terdapat lebih  dari satu isolat yang mampu menekan  pertumbuhan  jamur  patogen F.oxysporum dan P.capsici . .
Dengan  demikian  dapat  dikatakan bahwa  isolat  bakteri  B5  A  yang  berasal dari formula A dapat menghambat pertumbuhan  jamur  patogen P.capsici dan F.oxysporum. Efektivitas formula A terhadap  kedua  patogen  tersebut  akan menjadi  lebih  baik  lagi  apabila  formula tersebut ditambahkan isolat bakteri AKT7.
Pengaruh  Filtrat  Bakteri  Terhadap Perkecambahan Konidia pada Fusarium oxysporum dan  Zoospora Phytophthora capsici.
Pengamatan  pengaruh  filtrat  bakteri terhadap  perkecambahan  konidia  dan zoospora  dilakukan  selama  satu  hari. Secara  umum  semakin  tinggi  konsentrasi suspensi  filtrat  bakteri  yang  ditambahkan pada  suspensi  konidia F.oxysporum dan zoospora P.capsici menyebabkan  makin tingginya persentase penghambatan perkecambahan.
Hasil pengamatan pengaruh filtrat bakteri terhadap perkecambahan  zoospora P.capsici dapat dilihat dalam Tabel 10.
Tabel  7. Pengaruh  Kontrol    Media    dan Filtrat  Bakteri  Terhadap  Perkecambahan Zoospora Phytophthora capsici
Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom yang  sama  menunjukkan  tidak  berbeda  nyata  pada taraf 1%
Perlakuan Kontrol Media(%) Filtrat Bakteri (%) 12,5% 88,38 a 84,20 b 25% 87,60 a 83,97 b 50% 87,47 a 83,51 b Kontrol air 89,93 a
Keterangan : Kontrol media : suspensi zoospora + media TSB Kontrol air : suspensi zoospora murni (tanpa media TSB)
Dari  Tabel  8  dapat  dilihat  bahwa persentase perkecambahan zoospora
P.capsici kontrol  media  tidak  berbeda nyata bila dibandingkan dengan kontrol air, sehingga dapat dikatakan bahwa pemberian media  TSB  tidak  memberikan  pengaruh
terhadap
perkecambahan zoospora.
Perlakuan  dengan  menggunakan  filtrat bakteri  memberikan  hasil  yang  berbeda nyata dengan kontrol air. Dengan demikian dapat disimpulkan bahwa perlakuan dengan menggunakan filtrat bakteri mampu menghambat  perkecambahan  zoospora. Berdasarkan  hasil  perhitungan  semua konsentrasi filtrat bakteri memberikan hasil yang  tidak  berbeda  nyata  antar  perlakuan atau dengan kata lain memberikan pengaruh yang relatif sama dalam menghambat perkecambahan zoospora jamur  patogen P.capsici sehingga  jumlah zoospora  yang  tidak  berkecambah  lebih banyak  dibanding  jumlah  zoospora  yang berkecambah . Penghambatan  perkecamba- han  ini  diduga  karena  filtrat  bakteri mengandung  senyawa  antibiotik  yang bersifat  toksik  terhadap  zoospora  jamur P.capsici sehingga  filtrat  bakteri  ini mampu menghambat perkecambahan zoospora  jamur P.capsici. Penghambatan perkecambahan  jamur P.capsici dengan perlakuan  filtrat  bakteri  dapat  dilihat  pada Gambar 10.
Gambar 7. Isolat Phytopthora capsici
Keterangan :
a. Zoospora yang berkecambah
b. Zoospora yang belum berkecambah
Hasil  pengamatan  pengaruh  filtrat  bakteri terhadap
perkecambahan konidia F.oxysporum dapat dilihat dalam Tabel 11 :
Tabel  8. Pengaruh  Kontrol  Media  dan Filtrat  Bakteri  Terhadap  Perkecambahan Konidia Fusarium oxysprum
Perlakuan Kontrol Media (%) Filtrat Bakteri (%) 12,5% 5,35 a 5,13 b 25% 5,27 a 5,09 b 50% 5,20 a 5,06 b Kontrol Air 5,82 a
Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom yang  sama  menunjukkan  tidak  berbeda  nyata  pada taraf 1%
Keterangan : Kontrol media : suspensi konidia+ media TSB Kontrol air : suspensi konidia murni (tanpa media TSB)
Dari  Tabel  8  dapat  dilihat  bahwa persentase  perkecambahan F.oxysporum menggunakan  kontrol  media  tidak  berbeda nyata bila dibandingkan dengan kontrol air, sehingga dapat dikatakan bahwa pemberian media  TSB  tidak  memberikan  pengaruh
a
b
c
terhadap perkecambahan
konidia.
Perlakuan  dengan  menggunakan  filtrat bakteri  memberikan  hasil  yang  berbeda nyata dengan kontrol air. Dengan demikian dapat disimpulkan bahwa perlakuan dengan menggunakan filtrat bakteri mampu menghambat perkecambahan konidia. Berdasarkan  hasil  perhitungan  semua konsentrasi filtrat bakteri memberikan hasil yang  tidak  berbeda  nyata  antar  perlakuan atau dengan kata lain memberikan pengaruh yang relatif sama dalam menghambat perkecambahan konidia jamur  patogen F.oxysporum sehingga jumlah  konidia  yang  tidak  berkecambah lebih  banyak  dibanding  jumlah  konidia yang  berkecambah . Hal  ini  diduga  karena filtrat bakteri mengandung senyawa antibiotik  yang  bersifat  toksik  terhadap konidia jamur F.oxysporum sehingga filtrat bakteri ini mampu menghambat perkecambahan konidia jamur F.oxysporum (Loekas, 2008) . Penghambatan perkecambahan jamur F.oxysporum dengan  perlakuan  filtrat bakteri dapat dilihat pada Gambar 8.
Gambar 8. Isolat Fusarium oxysporum
Keterangan : A  :  Konidia yang belum berkecambah b :  Konidia yang berkecambah
Perlakuan menggunakan isolat bakteri  dan  filtratnya  terhadap  jamur patogen F.oxysporum dan P.capsici mampu  menghambat  pertumbuhan  dan perkecambahan  kedua  jamur  patogen  ini.
Menurut  Loekas  (2008),  bakteri  yang berasal  dari  risosfera  maupun  di  sekitar rizosfera mampu menghambat jamur-jamur patogen  untuk  menginfeksi  tanaman  inang sehingga  menjadi  layu  dan  mati.  Bakteri mengeluarkan  suatu  senyawa  antibiotik yang  mampu  menghancurkan  selaput  dari jamur  patogen  dan  mengganggu  sistem metabolismenya  sehingga  jamur  patogen tersebut tidak mempunyai kemampuan lagi untuk menginfeksi tanaman inangnya.

## KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan
Dari hasil pengamatan pemanfaatan isolat  bakteri  dan  filtrat  bakteri  terhadap pertumbuhan dan perkecambahan
Fusarium  oxysporum  dan  Phytopthora capsici , dapat disimpulkan bahwa :
1. Terdapat  delapan  isolat  bakteri  yang mampu menghambat pertumbuhan jamur  patogen Fusarium  oxysporum dan Phytopthora capsici
2. Isolat bakteri AKT7 merupakan bakteri yang paling efektif dalam menghambat pertumbuhan Fusarium oxysporum
sedangkan  isolat  bakteri            B5  A merupakan  bakteri  yang  paling  efektif dalam menghambat pertumbuhan
Phytopthora capsici.
3. Filtrat  bakteri  isolat  AKT7  dapat menghambat  perkecambahan  konidia
Fusarium  oxysporum dan zoospora Phytopthora capsici 4. Isolat  bakteri  antagonis  mengeluarkan senyawa antibiotik yang mampu menghambat pertumbuhan dan perkecambahan isolat Fusarium oxysporum dan Phytopthora capsici.

## Saran
Formula  yang  mengandung  isolat bakteri  B5A  dapat  ditambahkan  isolat bakteri  AKT7  agar  menjadi  formula  yang lebih  baik  dalam  mengendalikan  jamur patogen F.oxysporum dan P.capsici. Selanjutnya  formula  tersebut  disarankan
a b
untuk  diuji  secara in  vivo maupun  tingkat rumah kaca.

## DAFTAR PUSTAKA
Alexopoulos, C.J., and C. W. Mims.  1979.
Erwin,  D.C.  and  O.K.  Ribeiro.    1996. Phythophthora disease.    Worldwide.
APS. St Paul Minnesota.  p.562
Gazperz,  V.    1991.    Metode  Perancangan
Percobaan. Armico, Bandung. hlm. 185 Kaur.  R,  R.S.  Singh,  C.  Alaubouvette.    2007. Antagonistic  Activity  of  Selected Isolates  of  Florescents  Pseudomonas
Againts Fusarium  oxysporum .f.  Sp ciceri. Asian  Journal  of  Plant Sciences . VII(3):446-454.
Loekas,  S.    2008. Pengantar  Pengendalian Hayati  Penyakit  Tanaman .    PT.Raja grafindo Persada.  Jakarata.  hlm.181- 198.