## IDENTIFIKASI DAN UJI SENSITIVITAS BAKTERI PADA PLAK GIGI PASIEN DI PUSKESMAS RANOTANA WERU MANADO TERHADAP ANTIBIOTIK GOLONGAN MAKROLIDA DAN TETRASIKLIN
Lady Diana Logor 1) , Fatimawali 1) , Defny Silvia Wewengkang 1)
1) Program Studi Farmasi FMIPA UNSRAT Manado, 95115

## ABSTRACT
Dental plaque is the main causative agent of dental and oral diseases such as dental caries and periodontal.  Histometrically  the  plaque  consists  of  70%  of  bacterial  cells  and  30%  of  intercellular material essentially derived from bacteria. The aim of this study was to determine the type of bacteria and bacteriophage  sensitivity,  which  isolated  and  identified  from  dental  plaque  at  Ranotana  Weru  Manado Community Health Center for Macrolide (Erythromycin) and Tetracycline (Doxycycline) antibiotics. The bacteria were isolated from 3 dental plaque samples of patients and identified using physiological tests, biochemical tests, and gram staining. Bacterial sensitivity test was performed by diffusion method agar by using Erythromycin and Doxycycline antibiotic disc. The results of this study showed that the types of bacteria identified from dental plaque isolates were Streptococcus sp., Lactobacillus sp., Actinomyces sp., Veilonella  sp.,  Staphylococcus  sp.,  Actinobacillus  sp.,  Fusobacterium  sp.,  and  Escherichia  sp.  With highest sensitivity to doxycycline about 87%, and the highest resistance to Erythromycin about 62%.
Keywords : Bacteria, Dental Plaque, Sensitivity, Antibiotics

## ABSTRAK
Plak  gigi  merupakan  agen  penyebab  utama  penyakit  gigi  dan  mulut  seperti  karies  gigi  dan periodontal. Secara histometris plak terdiri dari 70% sel-sel bakteri dan 30% materi interseluler yang pada pokoknya  berasal  dari  bakteri.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  menentukan  jenis  bakteri  dan  tingkat sensitivitas  bakteri  yang  diisolasi  dan  diidentifikasi  dari  plak  gigi  pasien  di  Puskesmas  Ranotana  Weru Manado  terhadap  antibiotik  golongan  Makrolida  (Eritromisin)  dan  Tetrasiklin  (Doksisiklin).  Bakteri diisolasi  dari  3  sampel  plak  gigi  pasien  dan  diidentifikasi  menggunakan  uji  fisiologi,  uji  biokimia,  dan pewarnaan  gram.  Uji  sensitivitas  bakteri  dilakukan  dengan  metode  difusi  agar  dengan  menggunakan cakram antibiotik Eritromisin dan Doksisiklin. Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa jenis bakteri yang teridentifikasi dari isolat plak gigi yaitu Streptococcus sp. , Lactobacillus sp. , Actinomyces sp., Veilonella sp., Staphylococcus sp., Actinobacillus sp., Fusobacterium sp., dan Escherichia sp., dengan sensitivitas tertinggi terhadap Doksisiklin sebesar 87%, dan resisten tertinggi terhadap Eritromisin sebesar 62%.
Kata kunci : Bakteri, Plak gigi, Sensitivitas, Antibiotik

## PHARMACON Jurnal Ilmiah Farmasi – UNSRAT  Vol. 6 No. 3 AGUSTUS 2017  ISSN 2302 - 2493

## PENDAHULUAN
Menurut World Health Organization (WHO) kesehatan merupakan suatu keadaan sehat  yang  utuh  secara  fisik,  mental,  dan sosial  serta  bukan  hanya  bebas  dari  suatu penyakit  salah  satunya  yaitu  kesehatan  gigi dan mulut yang merupakan hal yang penting bagi  setiap  individu.  Menurut  Depkes  RI (2014)  penyakit  gigi  dan  mulut  menempati peringkat  sepuluh  besar  penyakit  terbanyak di Indonesia.
Agen  penyebab  utama  penyakit  gigi dan mulut yaitu plak yang melekat pada gigi sehingga  dapat  menimbulkan  berbagai penyakit seperti  karies  gigi  dan periodontal. Plak gigi merupakan lapisan lunak, tipis, dan padat  yang  menutupi  email  gigi,  celah gingiva dan kalkulus gigi. Secara histometris plak terdiri dari 70% sel-sel bakteri dan 30% materi  interseluler  yang  pada  pokoknya berasal  dari  bakteri.  Plak  bakteri  ini  dapat setebal beratus-ratus bakteri sehingga tampak  sebagai  lapisan  putih  (Asmawati, 2007). Secara biokimia bakteri  plak mampu dengan  cepat  memetabolisme  karbohidrat menjadi  asam  sehingga  dapat  merusak mineral-mineral gigi (Tarigan, 2004).
Pengobatan  yang  dilakukan  oleh dokter  gigi  untuk  membunuh  bakteri spesifik  dan  non  spesifik  penyebab  infeksi gigi  dan  mulut  biasanya  menggunakan antibiotik.  Walaupun  antibiotik  mempunyai manfaat  untuk  mencegah  dan  mengobati penyakit gigi dan mulut, tetapi efek samping dapat  timbul  bila  antibiotik  digunakan secara  terus  menerus  dan  irasional  berupa peningkatan bakteri yang resisten.
Di ilmu kedokteran gigi, tidak semua jenis  antibiotik  digunakan,  hanya  beberapa jenis  saja  yang  umum  digunakan  di
antaranya  antibiotik  golongan  β-laktam (seperti amoksisilin, amoksisilin-asam klavulanat, ampisilin, sefadroksil, sefaleksin, sefazolin, dan penisilin), linkosamida (seperti klindamisin), makrolida (seperti  azitromisin,  eritromisin),  kuinolon (seperti siprofloksasin), aminoglikosida (seperti  gentamisin),  tetrasiklin  (seperti doksisiklin)  dan  metronidazole  (Roda,  dkk. 2007).  Eritromisin  merupakan  obat  pilihan pada infeksi oleh bakteri kokus yang banyak dijumpai pada plak gigi dan merupakan obat alternatif pengganti peninsilin jika penderita alergi  atau  resisten  terhadap  peninsilin. Sedangkan Doksisiklin merupakan antibiotik  spektrum  luas  yang  efektif terhadap  bakteri  gram  positif  maupun  gram negatif (Irianto, 2013).

## METODOLOGI PENELITIAN
Pelaksanaan  penelitian  dilaksanakan pada  bulan  November  2016  sampai  bulan Juni  2017.  Tempat  penelitian  dilakukan  di Puskesmas
Ranotana Weru dan Laboratorium Mikrobiologi dan
Biomolekuler  Farmasi  Fakultas  Matematika dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam  Universitas Sam Ratulangi.

## Alat dan Bahan
Alat yang digunakan dalam penelitian  yaitu  :    Erlenmeyer  ( Approx ), Gelas  ukur  ( Pyrex ),  Tabung  reaksi  ( Pyrex ), Beaker  glass  ( Approx ),  Rak  tabung,  Hot plate,  Timbangan  analitik  ( Kern ),  Batang pengaduk,  Cawan  petri  ( Normax ),  Jarum ӧse, Inkubator ( Incucell ), Laminar Air Flow ( Biotek ),  Vortex,  Autoklaf  ( ALP ),  Lemari pendingin,  Mikropipet  ( Ecopipette ),  Vial, Kertas  label, Aluminium  foil ,  Plastic  wrap,

## PHARMACON Jurnal Ilmiah Farmasi – UNSRAT  Vol. 6 No. 3 AGUSTUS 2017  ISSN 2302 - 2493
Kapas,  Kasa,  Kaca  objek,  Mikroskop, Pinset,  Lampu  spiritus,  Mistar  berskala  dan Alat fotografi.
Bahan yang digunakan dalam penelitian  yaitu  :  Plak  gigi,  Aquades  steril, Alkohol,  NaCl  0,9%,  Lugol,  Kristal  violet, Safranin,  H 2 O 2 ,  Reagen covac ,  Cakram antibiotik Eritromisin 15μg ( Oxoid ), Doksisiklin  30μg  ( Oxoid ),  Tripton  ( Oxoid ), Yeast Extract ( Oxoid ), Agar Bacteriological ( Oxoid ) ,  Nutrient  Broth ( Oxoid ) ,  Simmon’s Citrate  Agar ( Oxoid ), Lysine  Iron  Agar ( Oxoid ), Triple  Sugar  Iron (TSI)  Agar ( Oxoid ) .

## Pengambilan Sampel
Pengambilan sampel plak gigi dilakukan  dengan  cara  mengambil  sampel plak  gigi  pada  3  pasien  di  Puskesmas Ranotana  Weru  Manado,  dimana  terlebih dahulu dilakukan pemeriksaan dalam rongga mulut  pasien  apakah  terdapat  plak  gigi  atau tidak.  Bila  terdapat  plak  gigi,  maka    plak gigi  diambil  menggunakan  alat  pembersih karang gigi, kemudian plak gigi dimasukkan kedalam  vial  yang  berisi  5  mL  NaCl  0,9% steril.

## Sterilisasi Alat
Alat-alat  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  disterilkan  terlebih  dahulu. Alat-alat  gelas  dan  media  disterilkan  dalam autoklaf  pada  suhu  121 0 C  selama  15-20 menit.  Sedangkan  untuk  jarum  ӧse,  pinset dan L-Glass dipijarkan  dengan  pembakaran diatas  api  langsung  (Lay  dan  Hastowo, 1992).
Pembuatan Media
a. Pembuatan  Media  Luria  Bertani  Agar Plate
Media LB dibuat dengan menimbang tripton  sebanyak  2  gram,  NaCl  sebanyak  2 gram, yeast  extract sebanyak  1  gram  dan agar  bacteriological sebanyak  3  gram, kemudian  dimasukan  kedalam  Erlenmeyer dan  dilarutkan  bersama  aquades  sebanyak 200  mL.  Setelah  itu,  dihomogenkan  dengan stirrer diatas penangas air sampai mendidih. Media  yang  sudah  homogen  ini  disterilkan dalam  autoklaf  pada  suhu  121 0 C  selama  15 menit,  kemudian  didinginkan  sampai  suhu ±45-50 0 C (Pangastuti dkk, 2002).
b. Pembuatan  Media  Luria  Bertani  Agar Miring
Media LB dibuat dengan menimbang tripton  sebanyak  0,5  gram,  NaCl  sebanyak 0,5  gram, yeast  extract sebanyak  0,25  gram dan agar  bacteriological sebanyak  0,75 gram, kemudian dimasukan kedalam Erlenmeyer dan dilarutkan bersama aquades sebanyak 50 mL. Setelah itu, dihomogenkan dengan  stirrer  diatas  penangas  air  sampai mendidih.  Media  yang  sudah  homogen  ini disterilkan  dalam  autoklaf  pada  suhu  121 0 C selama 15 menit, kemudian dituangkan pada masing-masing  tabung  reaksi  sebanyak  5 mL  dan  didinginkan  sampai  memadat  pada kemiringan 30 0 .

## Inokulasi Bakteri Pada Media
Sampel plak gigi  yang berada dalam vial  yang  berisi  NaCl  0,9  %  dihomogenkan dengan  vortex,  kemudian  diambil  sebanyak 1  mL  dan  dimasukkan  pada  tabung  reaksi yang  telah  berisi  9  mL  NaCl  0,9%. Selanjutnya  dipipet  sebanyak  1000  μL suspensi  bakteri  dan  dituangkan  keatas
media Luria  Bertani Agar Plate yang sudah memadat.  Selanjutnya  cawan  petri  di Seal dengan plastik Wrap.
Plak  gigi  yang  mengandung  bakteri yang  telah  ditanamkan  pada  media Luria Bertani  Agar Plate , selanjutnya    diinkubasi dalam    inkubator    pada  suhu  35-36 0 C. Biakan  diamati  setelah  inkubasi  selama minimal 18 jam, tetapi reinkubasi tambahan selama  24  jam  diindikasikan  jika  pada pertumbuhannya  kurang  dari  perkiraan  atau jika hanya terdapat sedikit koloni (Vandepitte dkk, 2010).

## Isolasi Bakteri
Setiap  koloni  yang  telah  ditanamkan pada  media Luria  Bertani  Agar Plate diambil  menggunakan  jarum  ӧse  dan dipindahkan  ke  media  agar  miring  untuk mendapatkan  isolat  bakteri,  selanjutnya diinkubasi  dalam  inkubator  pada  suhu  35- 36 0 C  selama  ±  18-24  jam  (Vandepitte  dkk, 2010).

## Identifikasi Bakteri
a. Uji Fisiologi
Uji  fisiologi  ini  dilakukan  dengan menggunakan uji motilitas.
b. Uji Biokimia
Identifikasi bakteri secara uji biokimia  menggunakan  uji  katalase,  uji H2S,  uji  lysine,  uji  fermentasi  karbohidrat, uji sitrat.
c. Uji Morfologi (Pewarnaan Gram)
Kaca  objek  dibersihkan  dengan kapas  yang  telah  diberi  alkohol,  lalu  diberi label.  Biakan  bakteri  pada  agar  miring  di ambil  dengan  menggunakan  jarum  ӧse,
kemudian  di  totol  pada  bagian  tengah  kaca objek  sampai  merata  dan  ditetesi  dengan aquades.  Preparat  selanjutnya  difiksasi  di atas lampu Bunsen (Fatimawali, 2016).
Preparat  diwarnai  dengan    kristal violet  dan  didiamkan  selama  1  menit,  lalu dicuci  dengan  aquades  dan  dikeringkan dengan  kertas  tissue,  kemudian  ditetesi dengan larutan lugol dan dibiarkan selama 1 menit.  Larutan  lugol  dbilas  dengan  alkohol 96% sampai semua zat warna tampak luntur, kemudian  dicuci  dengan  air  mengalir  dan dikeringkan.  Preparat  diberi  warna  kontras yaitu safranin dan dibiarkan selama 1 menit, selanjutnya  di  cuci  dengan  air  mengalir, dikeringkan  dan  diperiksa  di  mikroskop dengan menambahkan minyak imerasi.

## Uji kepekaan bakteri terhadap antibiotik
a. Pembuatan Larutan Mc. Farland 0,5 Larutan  H 2 SO 4 1%  sebanyak  9,95 mL  dicampurkan  dengan  larutan  BaCl 2 1,175%  sebanyak  0,05  mL  dalam  tabung reaksi.  Kemudian dikocok sampai terbentuk larutan  yang  keruh.  Kekeruhan  ini  dipakai sebagai  standar  kekeruhan  suspensi  bakteri uji (Bresson dan Borges, 2004).
b. Pembuatan Suspensi Larutan Uji Bakteri  uji  yang  telah  diinokulasi diambil  dengan  jarum  ӧse  steril,  lalu disuspensikan ke dalam tabung yang berisi 5 mL  larutan  NaCl  0,9%  hingga  diperoleh kekeruhan  yang  sama  dengan  standar kekeruhan larutan Mc. Farland 0,5. Perlakuan  yang  sama  dilakukan  pada  setiap jenis bakteri uji (Davis and Stout, 1971).
c. Penanaman Cakram
Dipipet suspensi bakteri uji sebanyak 200  μL  dan  dituangkan  ke  seluruh

## PHARMACON Jurnal Ilmiah Farmasi – UNSRAT  Vol. 6 No. 3 AGUSTUS 2017  ISSN 2302 - 2493
permukaan media Luria  Bertani Agar Plate selanjutnya diratakan menggunakan L-Glass dan  diamkan  selama  5  menit.  Tempatkan cakram Eritromisin 15 μg, Doksisiklin 30μg pada  permukaan  media Luria  Bertani  Agar Plate . Cakram Antibiotik ditekan menggunakan  pinset  agar  dapat  menempel secara  sempurna  di  permukaan  agar. Selanjutnya  diinkubasi  pada  suhu  37 0 C selama  18-24  jam.  Dibuat  tiga  kali  ulangan pada  cawan  petri  yang  berbeda  (Kumala dkk, 2010).
d. Pengukuran dan Penetapan Zona Hambat Pengamatan  dilakukan  setelah  1x24 jam    masa  inkubasi  dengan  3  kali pengulangan  untuk  masing-masing  bakteri. Daerah bening merupakan petunjuk kepekaan  bakteri  terhadap  antibiotik  atau bahan  antibakteri  lainnya  yang  digunakan sebagai  bahan  uji  yang  dinyatakan  dengan lebar  diameter  zona  hambat  (Vandepitte dkk, 2005). Kemudian zona hambat dibandingkan  berdasarkan  pedoman  CLSI
( Clinical and Laboratory Standards
Institute).

## HASIL DAN PEMBAHASAN Isolasi Bakteri dari Sampel Plak Gigi
Hasil  isolasi  dari  3  sampel  plak  gigi pada  pasien  di  Puskesmas  Ranotana  Weru diperoleh  16  isolat  bakteri  yaitu  untuk sampel  1  diberi  kode  isolat  S1  1.1,  S1  2.1, S1  3.1,  S1  4.1,  sampel  2  diberi  kode  isolat S2  1.1,  S2  2.1,  S2  3.1,  S2  3.2,  S2  4.1,  dan untuk sampel 3 diberi kode isolat S3 1.1, S3 1.2, S3 2.1, S3 2.2, S3 3.1, S3 3.2, S3 4.1.
Identifikasi Bakteri
Hasil dari uji morfologi, fisiologi dan biokimia  digabungkan  dan  digunakan  untuk menentukan jenis bakteri yang terdapat pada ke-16  isolat  yaitu  dengan  membandingkan hasil  uji  yang  diperoleh  dengan  petunjuk yang  terdapat  dalam  buku Bergey’s Manual Determinative of Bacteriology maka hasilnya dapat dilihat pada Table berikut :
Tabel  1.  Hasil  Identifikasi  Isolat  Bakteri pada Plak Gigi Kode Isolat Hasil Identifikasi Bakteri S1 1.1 Streptococcus sp. S1 2.1 Lactobacillus sp. S1 3.1 Actinomyces sp. S1 4.1 Streptococcus sp. S2 1.1 Veilonella sp. S2 2.1 Staphylococcus sp. S2 3.1 Actinobacillus sp. S2 3.2 Actinobacillus sp. S2 4.1 Fusobacterium sp. S3 1.1 Actinobacillus sp. S3 1.2 Lactobacillus sp. S3 2.1 Staphylococcus sp. S3 2.2 Escherichia sp. S3 3.1 Actinobacillus sp. S3 3.2 Escherichia sp. S3 4.1 Actinobacillus sp. Uji Kepekaan Bakteri Terhadap Antibiotik Sensitivitas bakteri terhadap
antibiotik  diperoleh  dengan  cara  mengukur diameter  zona  hambatan  yang  terbentuk setelah proses penempelan cakram antibiotik. Kemudian hasil yang didapat dari pengukuran  zona  hambatan  dibandingkan dengan  standar  diameter  zona  hambatan berdasarkan  pedoman  CLSI  ( Clinical  and Laboratory  Standards  Institute) .  Hasil  uji
sensitivitas bakteri terhadap antibiotik Doksisiklin  dan  Eritromisin  dapat  dilihat pada Table berikut :
Tabel 2. Hasil Uji Sensitivitas Antibiotik Kode Isolat Uji Sensitivitas Antibiotik Doksisiklin Eritromisin Zona Hambat (mm) Ket Zona Hambat (mm) Ket S1 1.1 17 S 7.33 R S1 2.1 12 I 0 R S1 3.1 11.33 I 5.66 R S1 4.1 16.83 S 13.33 R S2 1.1 16.66 S 2.66 R S2 2.1 21.83 S 18.83 I S2 3.1 20.16 S 19.5 I S2 3.2 14.16 S 5.83 R S2 4.1 19.16 S 20.5 I S3 1.1 14.66 S 2.66 R S3 1.2 17.33 S 15.83 R S3 2.1 17.16 S 8.16 R S3 2.2 21.66 S 16.16 I S3 3.1 24.66 S 20.16 I S3 3.2 22.33 S 16.83 I S3 4.1 17.5 S 14 R Keterangan : S = Sensitif, I = Intermediet, dan R = Resisten
Untuk  distribusi  frekuensi  pola sensitivitas bakteri terhadap antibiotik
Doksisiklin  dapat  dilihat  pada  Tabel  3 berikut :
Tabel 3. Distribusi Frekuensi Pola Sensitivitas Terhadap Doksisiklin Bakteri Doksisiklin S I R
Streptococcus sp. 2 0 0 Lactobacillus sp. 1 1 0 Actinomyces sp. 0 1 0 Veilonella sp. 1 0 0 Staphylococcus sp. 2 0 0 Actinobacillus sp. 5 0 0 Fusobacterium sp. 1 0 0 Escherichia sp. 2 0 0 Total 14 (87%) 2 (12%) 0 (0%)
Untuk  distribusi  frekuensi  pola sensitivitas  terhadap  antibiotik  Eritromisin dapat dilihat pada Tabel 4. berikut :
Tabel  4.  Distribusi  Frekuensi  Pola Sensitivitas Terhadap Eritromisin
Bakteri Eritromisin S I R Streptococcus sp. 0 0 2 Lactobacillus sp. 0 0 2 Actinomyces sp. 0 0 1 Veilonella sp. 0 0 1 Staphylococcus sp. 0 1 1 Actinobacillus sp. 0 2 3 Fusobacterium sp. 0 1 0 Escherichia sp. 0 2 0 Total 0 (0%) 6 (37%) 10 (62%)
Hasil  pengujian  sensitivitas  bakteri yang diisolasi dari plak gigi pasien terhadap antibiotik  Doksisiklin  dan  Eritromisin  pada Tabel 3. menunjukkan antibiotik Doksisiklin memiliki tingkat sensitif sebesar 87 %, serta intermediet  sebesar  12  %.  Sehingga  dapat disimpulkan  antibiotik  Doksisiklin  sensitif terhadap bakteri yang diisolasi dari plak gigi pasien  di  Puskesmas  Ranotana  Weru Manado. Antibiotik ini bisa dikatakan dapat
menghambat  atau  membunuh  pertumbuhan bakteri  yang  diisolasi  dari  plak  gigi  pasien. Adapun  mekanisme  kerjanya  yaitu  dengan menghambat  sintesis  protein  dengan  cara berikatan  pada  bagian  16S  ribosom  subunit 30S,  sehingga  mencegah  aminoasil-tRNA terikat  pada  situs  A  (situs  aktif)  pada ribosom.  Ikatan  ini  secara  alami  bersifat reversibel (Pratiwi,  2008).  Sedangkan  pada Tabel 4. menunjukkan antibiotik Eritromisin memiliki tingkat resisten sebesar 62%, serta intermediet sebesar 37%. Hal ini menunjukkan  bahwa  antibiotik  Eritromisin resisten  terhadap  bakteri  yang  diisolasi  dari plak  gigi  pasien,  hal  ini  sejalan  dengan penelitian  sebelumnya  yang  dilakukan Terence (2015) yang menunjukkan antibiotik  Eritromisin  resisten  terhadap bakteri bacillus sp.  yang  diisolasi  dari  plak gigi.  Begitupun  penelitian  yang  dilakukan Madinier, et  al (1999)  dimana  beberapa strain  pada  periodontal  resisten  terhadap antibiotik Eritromisin. Resistensi mikroorganisme terhadap antibiotik dibedakan menjadi resistensi bawaan (primer),  resistensi  dapatan  (sekunder)  dan resistensi episomal. Resistensi primer merupakan  resistensi  yang  menjadi  sifat alami  dari  mikroorganisme  tertentu,  bakteri yang  mempunyai  kapsul  pada  dinding selnya  dapat  melindunginya  dari  paparan antibiotik. Resistensi sekunder terjadi akibat kontak  dengan  antimikroba  dalam  waktu yang  cukup  lama  dan  frekuensi  tinggi sehingga  terjadi  mutasi  pada  bakteri, resistensi  juga  bisa  terjadi  karena  adanya mekanisme  adaptasi  aktivitas  bakteri  untuk melawan  obat  misalnya  dengan  membentuk enzim,  bakteri  memperkuat  dinding  selnya sehingga  dinding  sel  bersifat  impermiabel.
Sedangkan  resistensi  episomal  disebabkan oleh faktor genetik diluar kromosom, hal ini terjadi  karena  berpindahnya  plasmid  dari bakteri  yang  resisten  ke  bakteri  lain sehingga  bakteri  baru  menjadi  resisten (Pratiwi, 2008).
Mekanisme  kerja  Eritromisin  adalah dengan  menghambat  sintesis  protein  bakteri dengan cara berikatan pada ribosom subunit 50S  dan  mengganggu  reaksi  translokasi. Resistensi  terhadap  Eritromisin  biasanya disandi  oleh  plasmid.  Telah  diketahui terdapat tiga mekanisme, yakni :
(1) berkurangnya permeabilitas membran sel atau efluks aktif ;
(2)  pembentukan  (oleh Enterobacteriaceae ) enterase yang menghidrolisis makrolid ; dan (3) modifikasi tempat pengikatan di ribosom (yang disebut sebagai proteksi ribosom) oleh mutasi  kromosom  atau  oleh  metilase  yang terbentuk  secara  konstituitif  atau  akibat induksi makroli (Katzung et al , 2014).

## KESIMPULAN
Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan dapat disimpulkan bahwa : 1. Jenis  bakteri  yang  teridentifikasi  dari isolat  bakteri  plak  gigi  pasien  di Puskesmas Ranotana Weru Manado ialah jenis bakteri Streptococcus sp .,
Lactobacillus sp ., Actinomyces sp .,
Veilonella sp ., Staphylococcus sp ., Actinobacillus sp .,  Fusobacterium sp ., dan Escherichia sp .
2. Jenis bakteri Streptococcus sp ., Veilonella sp ., Staphylococcus sp ., Actinobacillus sp .,  Lactobacillus sp . , Fusobacterium sp ., dan Escherichia sp . sensitif  terhadap  antibiotik  Doksisiklin (87%)  dan  intermediet  yaitu  pada  jenis
bakteri Actinomyces sp . dan Lactobacillus sp . (12%).  Jenis  bakteri Streptococcus
sp .,  Lactobacillus sp . , Actinomyces sp .,
Veilonella sp .,  Actinobacillus sp . dan Staphylococcus sp . resisten  terhadap antibiotik Eritromisin (62%) dan
intermediet  yaitu  pada  jenis  bakteri Staphylococcus sp .,  Actinobacillus sp .,
Fusobacterium sp ., dan Escherichia sp . (
37%).

## SARAN
1. Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan  perlu  dipertimbangkan  untuk menjadikan  Doksisiklin  sebagai  salah satu  terapi  antibiotik  dalam  menangani infeksi  yang  berkaitan  dengan  gigi  dan mulut.
2. Bagi  tenaga  kesehatan  maupun  instansi terkait  diharapkan  untuk  memberikan terapi  antibiotik  sesuai  dengan  jenis bakteri  penyebab  berdasarkan  kultur mikrobiologi.
3. Perlu dilakukan penelitian dengan menggunakan  antibiotik  yang  berbeda dari yang digunakan dalam penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Asmawati.  2007. Analisis  Hubungan  Karies Gigi dan Status Gizi Anak Usia 10 –
11  Tahun  di  SD  Athirah,  SDN  1 Bawakaraeng dan SDN 3 Bangkala . Dentofasial  Jurnal.  Vol 6
(2) : halaman 78–84.
Bresson,  W.,  dan  M.T.  Borges.  2004. Delivery  Methods  for  Introducing Endophitic  Bacteria  into  Maize.
Biocontrol . 49 : 315-322.
Davis,  W.W  and  Stout,  T.R.  1971. Disc Plate  Methods  of  Microbiological Antibiotik Assay . Microbiology.
Departemen  Kesehatan  Republik  Indonesia. 2014. Info  Dantin  Pusat  Data  dan Infomasi Kementrian Kesehatan Republik  Indonesia. Kementrian Kesehatan Republik Indonesia, Jakarta. Fatimawali, 2016. Toksikologi : Detoksifikasi  Merkuri .  Unsrat  Press, Manado. Holt. 1994. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology 9 th
Edition. USA : Williams and Wilkins Baltimore.
Irianto,  Koes.  2013. Mikrobiologi  Medis . Alfabeta, Bandung.
Katzung,  Bertram  G.  2014. Farmakologi Dasar  dan  Klinik. Buku  Kedokteran EGC, Jakarta.
Kumala, S., D.A.M. Pasanema dan Mardiastuti.  2010. Pola  Resistensi
Antibiotik  Terhadap  Isolat  Bakteri Sputum  Penderita  Tersangka  Infeksi Saluran Nafas Bawah . Jurnal Farmasi  Indonesia.  Vol 5  : halaman 24-32.
Lay, B. W., Hastowo, S. 1992. Mikrobiologi . IPB, Bogor. Madinier IM., Fosse TB., Hitzig C., Charbit Y and Hannoun LR. 1999.

## PHARMACON Jurnal Ilmiah Farmasi – UNSRAT  Vol. 6 No. 3 AGUSTUS 2017  ISSN 2302 - 2493
Resistance  Profile  Survey  of  50
Periodontal Strains of Actinobacillus actinomycetemcomitans. J
Periodontol, 70 (8) : 888-92.
Pangastuti,  A.,  Dinamella,  W.,  Antonius,  S. 2002. Isolasi  Karakterisasi  dan
Kloning  Gen  Penyandi  a-Amilase Bakteri Halofil Moderat Asal Bledug Kuwu. Hayati,  Vol 9 No.  1  : halaman 10-14.
Pratiwi,  S.  2008.  Mikrobiologi  Farmasi.
Erlangga, Jakarta.
Roda  RP.,  Bagan  JV.,  Bielsa  JMS.,  Pastor EC.  2007. Antibiotic  Use  In  Dental
Practice.  Med  Oral  Patol  Oral  Cir
Bucal . 12: 186-92.
Tarigan,  Rasinta.  2004. Perawatan  Pulva Gigi  (Endodontil).  Edisi  2 .  EGC,
Jakarta.
Terence,  K.  2015. Uji  Resistensi  Bakteri
Bacillus Sp yang Diisolasi dari Plak Gigi Terhadap Merkuri dan Eritromisin [Skripsi].  Universitas
Sam Ratulangi, Manado.
Vandepitte.,  J.  Verhaegen.,  K.  Engbaek.,  P. Rohner.,  P.  Piot.,  C.C. Heuck.  2005. Prosedur  Laboratorium  Dasar  dan Untuk  Bakteriologis  Klinis.  Edisi  2.
Buku Kedokteran EGC, Jakarta.
Vandepitte,  J.,  K.  Engbaek.,  P.  Rohner.,
P.Piot.,  C.C.  Heuck . 2010. Prosedur
Laboratorium Dasar Untuk Bakteriologi Klinis. Edisi 2.
Terjemahan  L.  Setiawan . Buku Kedokteran EGC, Jakarta.