Uji Kemampuan Asap Cair secara in Vitro dan in Vivo Untuk Penyakit Antraknosa (Colletotrichum capsici) Pada Tanaman
Cabai (Capsicum annum L)
Liquid Vitility Tests in Vitro and in Vivo for Anthracnose Disease (Colletotrichum capsici) in Chili Plants (Capsicum annum L )
Vaya Zuanif 1 , Rika Despita 2 1,2 Politeknik Pembangunan Pertanian Malang; Jl Dr Cipto 144A Bedali, Lawang Malang 65200 kotak pos 144 Email: zuanife88@gmail.com

## ABSTRAK
Cabai mempunyai  nilai ekonomis   tinggi  di  Indonesia  dan  termasuk  komoditas startegis.  Penyakit  antraknosa  adalah  salah  satu  penyakit  penting  pada  tanaman  cabai. Pengendalian  penyakit  antraknosa  pada  tanaman  cabai  menggunakan  asap  cair  belum pernah  dilakukan  sehingga  penelitian  ini  perlu  untuk  dilakukan.  Tujuan  penelitian  ini adalah  untuk  mengetahui  kemampuan  asap  cair  dalam  mengendalikan  penyakit antraknosa pada tanaman cabai yang disebabkan oleh cendawan Colletotrichum capsici . Kajian dilakukan secara in vitro dan perlakuan yang sama dilakukan juga secara in vivo. Kajian in  vitro dilakukan    di  Laboratorium  Proteksi  Tanaman  dan  kajian in  vivo dilakukan  di  lahan  BBPP  Ketindan  dimulai  bulan  Maret  sampai  Juni  2018.  Metode kajian untuk in vitro yaitu Rancangan Acak Lengkap (RAL) dan metode kajian untuk in vivo yaitu Rancangan Acak Kelompok (RAK). Perlakuan terdiri dari  B0K0:tanpa asap cair,  B1K1:asap  cair  tempurung  kelapa  konsentrasi  1%,  B1K3:  asap  cair  tempurung kelapa konsentrasi 3%, B1K5: asap cair tempurung kelapa konsentrasi 5%, B1K7: asap cair tempurung kelapa konsentrasi 7%, B2K1: asap cair sekam konsentrasi 1%, B2K3: asap  cair  sekam  konsentrasi  3%,  B2K5:  asap  cair  sekam  konsentrasi  5%,  B2K7:  asap cair sekam konsentrasi 7%. Masing-masing perlakuan diulang sebanyak 4 kali sehingga diperoleh  36  satuan  percobaan.  Parameter  yang  diamati  adalah  diameter  koloni cendawan  dan  persentase  penghambatan  asap  cair.  Hasil  pengamatan in  vitro menunjukkan  bahwa  aplikasi  asap  cair  3%,  5%  dan  7%  mampu  menghambat pertumbuhan cendawan Colletotrichum capsici sebanyak 100%. Aplikasi asap cair dari tempurung  kelapa      secara in  vivo (lapangan)  dengan  konsentrasi  7%  mampu menghambat  pertumbuhan  cendawan Colletotrichum  capsici dan  aplikasi  asap  cair konsentrasi  1%  mampu  menghambat  pertumbuhan  cendawan Colletotrichum  capsici sampai  hari ke 4 setelah penyemprotan dengan arti lain penyemprotan perlu dilakukan setiap 4 hari sekali.

## Kata kunci—asap cair tempurung kelapa, asap cair sekam, antraknosa, cabai

## ABSTRACT
Chili has a high economic value in Indonesia and  is a very strategic commodity. Anthracnose disease is one of the important diseases in chili plants. Antraknosa disease control in chili plants using liquid smoke has never been done so this research needs  to be  done.  The  purpose  of  this  research  is  to  determine  the  ability  of  liquid  smoke  in controlling  anthracnose  diseases  in  chili  plants  caused  by  the  fungus  Colletotrichum capsici. The study was carried out in vitro and the same treatment was also carried out in vivo. In vitro studies are carried out at  the Plant Protection Laboratory and in vivo studies  are  carried  out  in  BBPP  Ketindan  land  from  March  to  June  2018.  The  study method for in vitro is the Completely Randomized Design (CRD) and the study method for in vivo is the Randomized Block Design (RCBD). The treatments consisted of B0K0: without  liquid  smoke,  B1K1:  coconut  shell  concentration  of  1%,  B1K3:  coconut  shell concentration  of  3%,  B1K5:  coconut  shell  concentration  of  5%,  B1K7:  coconut  shell concentration  of  7%,  B2K1:  husk  concentration  of  1%,  B2K3:  husk  concentration  of 3%, B2K5: husk concentration of 5%, B2K7: husk concentration of 7%. Each treatment was  repeated  4  times  to  obtain  36  experimental  units.  The  parameters  observed  were the  diameter  of  the  fungus  colonies  and  the  percentage  of  liquid  smoke  inhibition.  In vitro  observations  showed  that  the  application  of  liquid  smoke  3%,  5%  and  7%  were able  to  inhibit  the  growth  of  the  fungus  Colletotrichum  capsici  100%.  Application  of liquid  smoke  from  coconut  shell  in  vivo  (field)  with  a  concentration  of  7%  is  able  to inhibit  the  growth  of  Colletotrichum  capsici  fungi  and  application  of  liquid  smoke concentration of 1% can inhibit the growth of Colletotrichum capsici fungi until the 4th day after spraying with other means spraying needs to be done every 4 days once.
Keywords — coconut shell liquid smoke, husk liquid smoke, anthracnose, chili

## PENDAHULUAN
Tanaman  Cabai  ( Capsicum  sp) merupakan komoditas hortikultura unggulan  yang  mempunyai  potensi produksi  tinggi  dan  mempunyai  nilai ekonomi yang cukup penting.
Kebutuhan cabai terus meningkat setiap tahun  sejalan  dengan  meningkatnya jumlah  penduduk  dan  berkembangnya industri yang membutuhkan bahan baku cabai (Subagyono, 2010 dalam
Ferayanti  2016).  Kebutuhan  cabai merah pada bulan Maret, April, Mei dan Juni  masing-masing  93.645  ton,  93.743 ton,  97.  741  ton  dan  96.931  ton (Direktur  Sayuran  dan  Tanaman  Obat Kementan,  2018).  Untuk  memenuhi kebutuhan  tersebut,  harus  dilakukan upaya agar produktivitas tanaman cabai dapat meningkat. Salah satu upaya yang
dilakukan  adalah  pengendalian  hama dan  penyakit  tanaman  cabai.  Penyakit yang  sering  menyerang  tanaman  cabai adalah  antraknosa  atau  sering  disebut penyakit pathek.
Menurut  Syukur,  dkk  (2016) penyakit  antaknosa  ini  disebabkan  oleh sejenis cendawan Colletotrichum
capsici. Cendawan  ini  menyerang semua  bagian  tanaman  terutama  buah. Serangannya  pada  tanaman  dewasa dapat  menimbulkan  mati  pucuk,  lalu infeksi  berlanjut  ke  bagian  bawah  yaitu daun  dan  batang  yang  menimbulkan busuk kering coklat kehitaman. Penyakit  ini  menyebabkan  busuk  buah berwarna  seperti  terkena  sengatan matahari  dan  diikuti  oleh  busuk  basah yang  berwarna  hitam  karena  penuh dengan setae (rambut  hitam)  yang berbentuk konsentris. Buah yang
diserang  terutama  buah  yang  sudah  tua menjelang  merah.  Pada  umumnya petani  menggunakan  pestisida  sintetis untuk mengendalikan penyakit antraknosa. Penggunaan pestisida sintetik lebih  disukai  petani  dengan  alasan mudah  didapat,  prakis  dalam  aplikasi, tersedia dalam jumlah banyak dan hasil reatif  cepat  terlihat  (Kardinan,  2005 dalam Pangestu E. dkk, 2014). Pestisida anorganik  dalam  penerapannya  telah terbukti dapat menekan kerugian/ kerusakan hasil pertanian akibat organisme pengganggu, sehingga sampai  saat  ini  peran  pestisida  tidak dapat  dilepaskan  dalam  pencapaian target  produksi.  Namun  disisi  lain, pestisida  anorganik  berdampak  negatif. Ini  disebabkan  pestisida  anorganik disintesa dari bahan yang tidak terbarukan (seperti batubara dan minyak bumi)  sehingga  umumnya  beracun  dan berdampak  negatif  terhadap  lingkungan (Aisyah dkk, 2012).
Mengingat  efek  samping  yang ditimbulkan  oleh  penggunaan  pestisida di  atas,  maka  perlu  dikembangkan pestisida yang bersifat mudah terdegradasi  secara  alami,  bersifat toksik  terhadap  organisme  pengganggu tanaman  sasaran  tetapi  tidak  bersifat toksik  terhadap  manusia  dan  ternak  di sekitarnya, tidak mencemari lingkungan dan  tidak  berbahaya  bagi  kesehatan manusia  (Soetarno,  1994 dalam Aisyah dkk,  2013).  Salah  satu  alternatif pestisida  untuk  mengatasi  masalah tersebut adalah dengan asap cair ( liquid smoke) . Menurut  Girard  (1992) dalam Pangestu  E,  dkk  (2014) , asap  cair merupakan  cairan  kondensat  uap  asap hasil  pirolisis  bahan  yang  mengandung senyawa  penyusun  utama  asam,  fenol, dan  karbonil  hasil  degradasi  termal komponen  selulosa,  hemiselulosa  dan lignin.  Senyawa  asam,  fenol  dan
karbonil  dalam  asap  cair  memiliki kontribusi  dalam  karakteristik  aroma, warna  dan flavor .  Senyawa    fenol  ini memiliki  sifat  anti-mikroba  yang  kuat dan  salah  satu  kegunaan  yang  paling awal adalah sebagai antiseptik.
Penelitian asap cair dari tempurung  kelapa  dan  sekam  untuk menghambat  pertumbuhan  cendawan colletotrichum  capsici pada  tanaman cabai belum  dilakukan  baik  secara in vitro maupun in  vivo .  Oleh  karena  itu penelitian  ini  penting  untuk  dilakukan, walaupun  penelitian  aplikasi  asap  cair pada tanaman mentimun untuk penyakit antraknosa  telah  dilakukan.  Penelitian aplikasi  asap  cair  dalam  pengendalian penyakit yang disebabkan oleh pathogen seperti Pythium sp., Sclerotium  oryzae dan Rhizoctonia solani juga  telah  dilakukan.  Penelitian yang  dilakukan  oleh  Chalermsan  dkk, (2009)  menunjukkan  bahwa  asap  cair atau  asam  cuka  dapat  menghambat pertumbuhan Pythium  sp.,  Sclerotium oryzae dan Rhizoctonia  solani pada konsentrasi 2%, sedangkan Choanephora cucurbitarum , Colletotrichum.  gloeosporioides dan Helminthosporium maydis dapat
dihambat pada konsentrasi >2% yaitu 3 - 4%.

## METODE PENELITIAN

## Tempat dan Waktu
Kajian in  vitro dilaksanakan  di Laboratorium  Proteksi  Tanaman  Balai
Besar  Pelatihan  Pertanian  (BBPP) Ketindan dan kajian in vivo dilaksanakan  di  lahan  BBPP  Ketindan. Pelaksanaan kajian dimulai bulan Maret sampai bulan Juli 2018.

## Alat dan Bahan
Peralatan    yang  digunakan  pada kajian in vitro dan in vivo adalah botol scot,  erlenmeyer,  cawan  petri,  gelas
ukur,  tabung  reaksi,  ose, cork  borer , autoklaf , neraca  analitik, laminar  air flow , hand  sprayer ,  bunsen,  kaca preparat, , tabung  ukuran  50  ml,  jarum steril,  mikropipet,  alat  tulis  menulis (spidol  permanen,  buku,  pulpen  dan penggaris,  kertas  label).  Bahan  yang digunakan  adalah  aquades,  kertas, plastik, alumunium  foil, PDA  instan, alkohol, plastic wrap , spirtus, korek api, asap  cair  dari  bahan  tempurung  kelapa, asap  cair  dari  sekam,  isolat  cendawan Collectotricum  capsici (diperoleh  dari Laboratorium  PHT  BBPOPT  Jatisari Karawang)  dan  tanaman  cabai  varietas Pilar yang sudah berbuah.

## Rancangan Kajian
Metode  kajian in  vitro adalah Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  dan kajian in vivo dilakukan dengan metode Rancangann  Acak  Kelompok  (RAK). Kajian in  vitro maupun in  vivo dilakukan dengan 9 perlakuan yaitu: B0K0 = kontrol (tanpa asap cair) B1K1  =  asap  cair  dari  tempurung kelapa dengan konsentrasi 1% B1K3  =  asap  cair  dari  tempurung kelapa dengan konsentrasi 3%
B1K5  =  asap  cair  dari  tempurung kelapa dengan konsentrasi 5%
B1K7  =  asap  cair  dari  tempurung kelapa dengan konsentrasi 7%
B2K1 =  asap  cair  dari  sekam  dengan konsentrasi 1% B2K3 =  asap  cair  dari  sekam  dengan konsentrasi 3%
B2K5 =  asap  cair  dari  sekam  dengan konsentrasi 5%
B2K7 =  asap  cair  dari  sekam  dengan konsentrasi 7%
Masing-masing  perlakuan  di  ulang  4 kali  sehingga  diperoleh  36  satuan percobaan.

## Pelaksanaan Kajian
Kajian aplikasi asap cair secara in vitro dilakukan  dalam  beberapa  kegiatan,
mulai  dari  sterilisasi  alat  dan  bahan, pembuatan  medium  PDA,  sub  kultur cendawan c.capsici, dan  uji in  vitro . Aplikasi  asap  cair  secara  uji in  vivo dilakukan  dengan  tahapan:  pembuatan larutan  cendawan,  pembuatan  larutan asap  cair  dan  uji in  vivo yaitu  dengan penyemprotan asap cair dan menginokulasi cendawan ke buah cabai. Parameter Pengamatan a. Diameter koloni cendawan Pengamatan diameter koloni cendawan  pada in  vitro dilakukan setiap hari hingga hari ke 14. Pengamatan  diameter  koloni  cendawan pada in vivo dilakukan dengan interval
3 hari sekali. Dimulai dari sehari setelah inokulasi  sampai  hari  ke  13.  Cara pengukuran koloni cendawan berdasarkan rumus berikut: Rumus:
2 2 1 d d D + = Keterangan:
D   = diameter cendawan C.capsici (cm)
1 d = diameter vertikal koloni cendawan
C. capsici (cm) 2 d = diameter horizontal koloni
cendawan C. capsici ( cm)

## b. Persentase  penghambatan  Asap Cair terhadap cendawan c.capsici
Cara  menghitung  penghambatan pertumbuhan cendawan C. capsici pada kajian in  vitro dengan  menggunakan rumus Pandey dkk dalam Pangestu dkk (2014):
P = x 100%
Keterangan:
P = penghambatan
a  =  diameter  miselia  cendawan  pada kontrol
b  =  diameter  miselia  cendawan  pada perlakuan

## Analisis Data
Data  hasil  pengamatan  dianalisis menggunakan  uji  Anova  taraf  5  %.  Uji lanjut dilakukan dengan uji DMRT taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Kajian in vitro
a. Pengaruh  Asap  Cair  Terhadap Diameter Cendawan
Hasil pengamatan menunjukkan terdapat  perbedaan  yang  nyata  antara perlakuan  (lihat  Tabel  1).  Pertumbuhan koloni cendawan masing-masing
perlakuan dapat dilihat pada  Gambar 1.
Aplikasi asap cair pada konsentrasi 3%, 5%  dan  7%  yang  berasal  dari
tempurung  kelapa  dan  sekam  dapat menghambat  pertumbuhan  cendawan
Colletotrichum capsici penyebab penyakit antraknosa pada  tanaman cabe merah. Sedangkan asap cair konsentrasi 1 % belum mampu menekan pertumbuhan  cendawan Colletotrichum capsici .  Cendawan C.capsici pada aplikasi 1% asap cair tempurung kelapa mulai  tumbuh  pada  hari  ke  dua, sedangkan  pada  aplikasi  asap  cair  dari sekam  tumbuh  pada  hari  pertama.  Pada perlakuan  kontrol  diameter  koloni cendawan C.capsici menunjukkan hasil yang  paling  tinggi  setelah  14  hari pengamatan.
Gambar 1. Pertumbuhan Koloni Cendawan C.capsici pada Masing-masing Perlakuan Secara In
Vitro

## Tabel 1. Rerata Diameter koloni cendawan C.capsici secara In Vitro
Perlakuan Pengamatan hari ke- 1 2 3 4 5 6 7 B0K0 1,38  c 1,89  d 2,64  d 3,08  c 3,75  c 4,24  c 4,66  c B1K1 0,55  b 0,71  b 1,05  b 1,83  b 2,45  b 2,95  b 3,58  b B1K3 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B1K5 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B1K7 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B2K1 0,81  b 1,35  c 1,74  c  2,19 b  2,81  b 3,18  b 3,55  b B2K3 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B2K5 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a
K ont ro l B1 K 1 B 1K 3 B1 K 5 B1 K 7 B2 K 1 B2 K 3 B2 K 5 B2 K 7
B2K7 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a Perlakuan Pengamatan hari ke- 8 9 10 11 12 13 14 B0K0 5,05  c 5,56  c 6,01  c 6,49  d 7,01  d 7,58  d 8,10  d B1K1 4,00  b 4,48  b 5,03  b 5,48  c 5,94  c 6,33  c 6,70  c B1K3 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B1K5 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B1K7 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B2K1 3,83  b 4,13  b 4,54  b 4,86  b 5,20  b 5,54  b 5,85  b B2K3 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B2K5 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B2K7 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a Keterangan:  angka  yang  diikuti  oleh  huruf  yang  berbeda  berarti  berbeda  nyata,    sedangkan angka yang diikuti huruf yang sama berarti tidak berbeda nyata pada taraf  5%. Pemberian  asap  cair  pada  media
PDA  memberikan  pengaruh  terhadap pertumbuhan jamur Colletotrichum capsici. Pengaruhnya  dapat  dilihat  dari diameter yang semakin mengecil bahkan tidak tumbuh pada aplikasi asap cair  pada  konsentrasi  lebih  tinggi. Pengaruh  tersebut  disebabkan  karena asap  cair  mengandung  senyawa  yang bersifat  antimikrobia.  Senyawa  utama yang  berperan  sebagai  antimikrobia adalah  asam  asetat,  fenol,  dan  alkohol. Senyawa  yang  mendominasi  (sekitar 50%) adalah asam asetat. Hal ini sesuai dengan  pernyataan  Coryanti  dan  Frida (2015)  bahwa  asam  asetat  dapat menghambat pertumbuhan
mikroorganisme yang berkembang, sedangkan  alkohol  merupakan  senyawa yang  berfungsi  sebagai  denaturasi protein, sehingga dapat merusak membran  sel.  Sementara  fenol  adalah senyawa desinfektan yang dapat menghambat aktivitas enzim.
b. Persentase  Penghambatan  Asap Cair  terhadap  Perkembangan Cendawan Hasil  pengamatan  menunjukkan bahwa terdapat perbedaan yang
signifikan pada persentase daya hambat perkembangan  cendawan C.  capsici oleh asap cair (Tabel 2.) . Asap cair dari tempurung kelapa dan sekam menunjukkan  hasil  yang  sama.  Pada konsentrasi  asap  cair  3%,  5%  dan  7% mampu  menghambat  perkembangan cendawan Colletotrichum capsici 100%. Aplikasi asap cair pada konsentrasi 1% belum mampu menghambat  pertumbuhan  cendawan
Colletotrichum  capsici. Pertumbuhan cendawan C.capsici sampai  16,88% pada  perlakuan  asap  cair  tempurung kelapa  dan  27,54%  pada  asap  cair  dari sekam.

## .
Tabel 2. Rerata Persentase Penghambatan Asap Cair terhadap Cendawan C.capsici secara In Vitro Perlakuan Pengamatan hari ke- (%) 1 2 3 4 5 6 7 B0K0 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B1K1 57,69  b 58,12  c 59,52  c 37,90  b 32,39  b 27,93  b 21,48  b B1K3 100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  c B1K5 100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  c B1K7 100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  c
B2K1 41,01  b 26,91  b 31,96  b 28,17  b 24,37  b 23,81  b 23,35  b B2K3 100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  c B2K5 100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  c B2K7 100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  c Perlakuan Pengamatan hari ke- (%) 8 9 10 11 12 13 14 B0K0 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a 0,00  a B1K1 19,25  b 18,21  b 15,31  b 14,58  b 14,74  b 15,94  b 16,88  b B1K3 100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  d  100,00  d B1K5 100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  d  100,00  d B1K7 100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  d  100,00  d B2K1 23,81  b 25,51  b 24,15  b 24,71  c 25,58  c 26,54  c 27,54  c B2K3 100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  d  100,00  d B2K5 100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  d  100,00  d B2K7 100,00  c  100,00  c  100,00  c  100,00  d  100,00  d  100,00  d  100,00  d Keterangan: angka yang diikuti oleh huruf yang berbeda  pada kolom yang sama  menunjukkan terdapat perbedaan yang signifikan  antara perlakuan pada uji DMRT taraf 5%
Asap cair dari bahan baku tempurung kelapa dan sekam mempunyai kemampuan  antibakteri  dan  antifungi karena didalamnya mengandung senyawa seperti  alkohol,  fenol  dan  asam  organik. Ini  sesuai  dengan  pendapat  Ray  and Sadin  (1993) dalam Aisyah  (2012)
mengatakan  bahwa  efek  antimikrobia asam  dari  asap  cair,  diduga  secara langsung dapat mengasamkan
sitoplasma, merusak tegangan permukaan membran  dan  hilangnya  transport  aktif makanan  melalui  membran  sehingga menyebabkan  distabilisasi  bermacam- macam  fungsi  dan  struktur  komponen sel. Sedangkan antimikrobia fenol berfungsi  sebagai:  a)  bereaksi  dengan membran sel yang menyebabkan terganggunya kerja permeabilitas membrane sel, b) inaktivasi enzim-enzim esensial,  c)  perusakan  atau  inaktivasi fungsional  material  genetic,  d)  bekerja
sebagai  penghidrolisis  lipid  sehingga merusak  membran  sel  (Davidson  and Branen  (1981) dalam Aisyah  (2012). Vickery  (1981) dalam Aisyah  (2012)
menyatakan  bahwa  senyawa  fenolat mempengaruhi fungsi mitokondria sehingga  mengganggu  respirasi  sel.  Hal ini menyebabkan
penghambatan pertumbuhan  cendawan Colletotrichum capsici.
Kajian in vivo a. Pengaruh  Asap  Cair  Terhadap Diameter Cendawan Colletotrichum capsici Hasil pengamatan menunjukkan bahwa terdapat perbedaan yang signifikan  antar  perlakuan  terhadap diameter cendawan Colletotrichum capsici pada  buah  cabai  (Tabel  3.  dan
Gambar 2).
Tabel 3. Rata-rata Diameter koloni cendawan C.capsici secara in vivo Perlakuan Pengamatan hari ke 1 4 7 10 13 B0K0 0  a 0  a 0,70  c 1,60  d 2,61  c B1K1 0  a 0  a 0,21  ab 0,48  abc 0,69  ab B1K3 0  a 0  a 0,16  a 0,37  ab 0,52  ab B1K5 0  a 0  a 0,11  a 0,23  ab 0,30  a B1K7 0  a 0  a 0,08  a 0,13  a 0,21  a
B2K1 0  a 0  a 0,36  b 0,81  c 1,00  b B2K3 0  a 0  a 0,24  ab 0,61  bc 0,82  ab B2K5 0  a 0  a 0,16  a 0,34  ab 0,50  ab B2K7 0  a 0  a 0,11  a 0,23  ab 0,33  a
Keterangan:  angka  yang  diikuti  oleh  huruf  yang  berbeda  pada  kolom  yang  sama  menunjukkan terdapat perbedaan yang signifikan  antara perlakuan pada uji DMRT taraf 5%
Hasil  pengamatan  sampai  hari  ke
4 koloni cendawan Colletotrichum capsici belum  terlihat.  Pada  pengamatan hari  ke  7  cendawan Colletotrichum capsici sudah  tumbuh  pada  beberapa perlakuan yaitu perlakuan kontrol, konsentrasi 1% dan konsentrasi 3% untuk asap  cair  dari  sekam.  Pada  pengamatan hari ke 10 dan 13 perlakuan asap cair dari tempurung  kelapa  pada  konsentrasi  7% tidak  mampu  ditumbuhi  oleh  cendawan Colletotrichum capsici.
Terdapat perbedaan diameter cendawan Colletotrichum  capsici pada perlakuan  asap  cair  dari  tempurung kelapa  dan  asap  cair  dari  sekam.  Hal  ini disebabkan oleh perbedaan pH dari kedua asap cair. pH asap cair tempurung kelapa adalah diantara 2-3 dan pH sekam adalah 4. Sedangkan pH optimal untuk pertumbuhan  cendawan Colletotrichum capsici yang  baik  adalah  pH  5-7 (Yulianty (2006) dalam Nababan (2008). Salah  satu  faktor  yang  menghambat pertumbuhan cendawan C. capsici karena pH asap cair yang asam yang tidak sesuai dengan  pH  optimal  untuk  pertumbuhan cendawan.
Selain pH yang rendah, kandungan  alkohol  dan  fenol  juga merupakan senyawa yang memliki fungsi sinergi  sebagai  denaturan  protein  dan penghidrolisis lipid sehingga dapat merusak  membran  sel  pada  tubuh jaringan  cendawan  dan  menginaktivasi enzim  yang  disekresikan  cendawan Colletotrichum  capsici (Pelczar  (1988) dalam Aisyah  (2012).  Kerusakan  protein dan  lipid  pada  membran  sitoplasma  sel menyebabkan  membran  tersebut  menjadi bocor dan akibatnya permeabilitas membran  sel  menjadi  terganggu.  Ini mengakibatkan  membran  menjadi  tidak bersifat  semi  permeabel,  sehingga  kerja enzim  permease  pada  membran  yang menjadi tempat keluar masuknya senyawa-senyawa  tertentu  ke  dalam  sel menjadi terganggu, dan akhirnya mengganggu penyerapan nutrisi, dan jika aktivitas  penyerapan  nutrisi  dari  inang untuk  metabolismenya  terganggu,  bisa mengakibatkan  terganggunya  aktivitas biologis  dan  fisiologis  cendawan  dan akhirnya menyebabkan kematiannya
(Fardiaz, 1992 dalam Aisyah, 2012).
.B0K0
B1K1
B1K3
B1K5 B1K7 B2K1 B2K3 B2K5 B2K7 Gambar 2. Diameter cendawan pada Masing-masing Perlakuan secara In Vivo
Berdasarkan  hasil  pengamatan  maka untuk  aplikasi  asap  cair  di in  vivo (lapangan)  terdapat  2  alternatif  yaitu:  1) apabila  ditinjau  dari  segi  ekonomisnya, penyemprotkan asap cair dari tempurung kelapa  ataupun  dari  sekam  dengan konsentrasi 1% (B1K1 dan B2K1) dapat dilakukan setiap 4 hari sekali; 2) apabila ditinjau dari segi kemampuan menghambatnya,  penyemprotkan  asap cair tempurung  kelapa  7%  dapat menghambat  pertumbuhan  cendawan C. capsici.

## KESIMPULAN
Kajian asap cair untuk
mengendalikan cendawan c.capsici pada skala in  vitro menunjukkan  bahwa  rata– rata asap cair dari tempurung kelapa dan
sekam mampu
menghambat
pertumbuhan  cendawan Colletotrichum capsici 100% pada  konsentrasi  3%,  5% dan  7%.    Aplikasi  asap  cair  dari tempurung  kelapa      secara  in  vivo (lapangan) dengan konsentrasi 7% mampu menghambat pertumbuhan cendawan Colletotrichum  capsici dan aplikasi asap cair konsentrasi 1% mampu menghambat  pertumbuhan  cendawan Colletotrichum capsici sampai  hari ke 4 setelah  penyemprotan  dengan  arti  lain penyemprotan  perlu  dilakukan  setiap  4 hari sekali.

## DAFTAR PUSTAKA
Aisyah, I. Juli, N dan Gustan Pari. 2013. Pemanfaatan Asap Cair Tempurung Kelapa untuk
Mengendalikan Cendawan Penyebab  Penyakit  Antraknosa dan Layu Fusarium pada Ketimun. Jurnal  Penelitian  Hasil Hutan Vol. 31 No.2, Juni 2013:170-178.  ISSN:0216  –  4329 Terakreditasi  No.:443/AU2/P2MI- LIPI/08/2012 Chalermsan,  Yanyong  and  Peerapan, Sukhumwat. 2009. Wood Vinegar: By-Product From Rural  Charchoal  Kiln  and  Its Role  In  Plant  Protection. Asian
Journal  Food  and  Agro-Industry. 2009,  Special  Issue,  S189-S195, ISSN 1906-3040.
Corryanti  dan  Frida  E.  Astanti.  2015. Memproduksi Cuka (Asap Cair) untuk Kesehatan Tanaman.
Cepu:  Puslitbang  Perum  Perhutani
Cepu.
Direktur  Sayuran  dan  Tanaman  Obat Kementerian Pertanian.2018. Kementerian  Pertanian  Sebut Ketersediaan Cabai dan Bawang Merah Aman. Jakarta:Tribunnews. www.tribunnews.com .  diakses
bulan Agustus 2018.
Ferayanti,  F.  2016. Aplikasi  Asap  Cair dalam Pengendalian Hama Thripssp  pada  Cabai  Merah (Capsicum annum L.). Aceh: BPTP Aceh. Nababan,  E.R.M.  2008. Pengaruh Pemberian  Pupuk,  Fungisida dan  Jarak  Tanam  Terhadap Penyakit Antraknosa (Colletotrichum capsici) pada Tanaman Cabai (CapsicumannuumL.) di Lapangan . Skripsi. Sumatera Utara:  Universitas  Sumatera  Utara http://repository.usu.ac.id.  Diakses tanggal 26 Nopember 2017.
Pangestu,  E.,  Suswanto,  I.,  Supriyanto. 2014. Uji Penggunaan Asap Cair Tempurung Kelapa dalam Pengendalian  Phytophthora  sp Penyebab  Penyakit  Busuk  Buah
Kakao  secara  In  Vitro. J. Perkebunan & Lahan Tropika, Vol.
4, No. 2 Desember 2014.
Syukur, M. Yunianti, R dan Rahmasyah
Dermawan. 2016. Budidaya
Cabai Panen
SetiapHari .Jakarta:Penebar Swadaya.
.