Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
Terakreditasi RISTEKDIKTI Peringkat SINTA 4, SK. 30/E/KPT/2019

## Identifikasi komponen dan Uji Potensi Anti Jamur Minyak Atsiri Serai Dapur
(Cympobogon citratus) Terhadap Jamur Penghasil Aflatoksin
Component identification and the Measurement of Antifungal Potential of Lemongrass oil against Aflatoxin Producing Fungi
Rini Yanti, Hermina Nurdiawati, Muhammad N. Cahyanto, Yudi Pranoto
Departemen Teknologi Pangan dan Hasil Pertanian, Fakultas Teknologi Pertanian, Universitas Gadjah Mada, Jl. Flora no 1, Yogyakarta 55281, Indonesia
*Penulis korespondensi: Rini Yanti, e-mail: riniyanti@ugm.ac.id
Tanggal submisi: 13 Juli 2020; Tanggal penerimaan: 25 September 2020

## ABSTRACT
Aspergillus flavus and A. parasiticus are food spoilage fungi and produce aflatoxin that causes serious food safety problems. The antifungal agent is needed to control these fungi. This study aimed to determine the component of lemongrass essential oil and to test the oil’s ability to inhibit the growth of A. flavus and A. parasiticus . Five variations in the concentration of lemongrass oil were tested separately on A. flavus and A. parasiticus and, fungal growth was observed for 7 days. The results of the identification of the essential oil components using GC-MS showed that lemongrass essential oil has the main components of citral (53.77%) and z-citral (34.05%). Lemongrass essential oil with various concentrations (0.01%; 0.02%; 0.04% and 0.08%) showed the ability to inhibit the growth of A. flavus and A. parasiticus and the concentration of 0.08% indicated that lemongrass oil could inhibit the growth of both fungi for 100% during 7 days of observation.
Keywords: antifungal, aflatoxin, citral, essential oil, lemongrass oil

## ABSTRAK
Aspergillus  flavus dan A.  parasiticus merupakan  jamur  yang  banyak  ditemukan  mengkontaminasi pangan.  Kedua  jamur  tersebut  menghasilkan  aflatoksin,  yang  berbahaya  bagi  kesehatan  manusia,  sehingga diperlukan  anti-jamur  untuk  mengendalikan  pertumbuhannya.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui komponen  minyak  atsri  serai  ( Cymbopogon  citratus )  dan  menguji  kemampuan  minyak  tersebut  sebagai penghambat pertumbuhan A. flavus dan A. parasiticus. Lima variasi konsentrasi minyak serai diujikan secara terpisah pada A. flavus dan A. parasiticus dan dilakukan pengamatan pertumbuhan jamur selama 7 hari. Hasil identifikasi komponen minyak atsiri menggunakan GC-MS menunjukkan bahwa minyak atsri serai memiliki komponen  utama  citral  (53,77%)  dan  z-citral  (34,05%).  Minyak  atsiri  serai  dengan  berbagai  konsentrasi (0,01%;  0,02%;  0,04%  dan  0,08%)  menunjukkan  kemampuan  menghambat  pertumbuhan A.  flavus dan A. parasiticus dan  konsentrasi  0,08  %  menunjukkan  bahwa  minyak  serai  mampu  menghambat  pertumbuhan kedua jamur sebesar 100 % selama 7 hari pengamatan
Kata kunci: antijamur, aflatoksin, minyak atsiri, minyak serai, sitral

## PENDAHULUAN
Aspergillus  flavus dan Aspergillus  paraci- ticus merupakan  dua  jenis  jamur  yang  sering mengkontaminasi  bahan  pertanian,  baik  pangan
maupun pakan (Davari et al ., 2015). Di Indonesia, A.  flavus  dan  A.  parasiticus banyak  ditemukan mengkontaminasi  serealia  dan  kacang-kacangan (Sardjono et al ., 1992). Kedua jamur tersebut tidak hanya  mengkontaminasi  pangan  yang  menyebab-
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
kan penurunan kualitas produk tersebut, tetapi juga dapat  menghasilkan  mikotoksin  seperti  aflatoksin. Aflatoksin  diketahui  mempunyai  potensi  untuk menimbulkan  potensi mutagenic,  carcinogenic, teratogenic,  hepatotoxic, dan immunosuppressive, dan  juga  menghambat  beberapa  sistem  metabolik (Bluma dan Etcheverry, 2008).
Perlakuan  yang  biasa  dilakukan  untuk  me- ngendalikan pertumbuhan jamur adalah pemberian fungisida sintetis, akan tetapi penggunaan fungisida sintetis mulai ditinggalkan karena trend pola hidup sehat dengan makanan alami sedang berkembang di masyarakat. Akhir dekade ini, perhatian masyarakat akan bahaya residu, polutan, karsinogen, fitotoksik yang  ditimbulkan  oleh  penggunaan  fungisida  sin- tetis  meningkat.  Hal  ini  mendorong  penemuan alternatif bahan alami sebagai fungisida yang aman untuk  mengontrol  kontaminasi  jamur  fitopatogen. Pertimbangan lain adalah kemampuannya diuraikan secara  biologi  ( biodegradable ),  bisa  diperbaharui ( renewable ),  dan  aman  untuk  kese-hatan  manusia. Beberapa  minyak  atsiri  telah  diklasifikasikan sebagai Generally Recognized as Safe (GRAS) dan aktivitas  anti  jamur  dan  antibakteri  pada  berbagai mikroorganisme  telah  dilakukan  pada  penelitian sebelumnya (Tripathi et al. , 2009).
Terdapat berbagai jenis tanaman di Indonesia yang  dapat  dimanfaatkan  dalam  bentuk  minyak atsiri. Salah satu jenis tanaman yang dapat diambil minyak  atsirinya  adalah  tanaman  rempah.  Dalam penelitian  ini,  minyak  atsiri  dari  serai  dievaluasi sifat  anti-jamurnya  terhadap  A. flavus dan  A. parasiticu s. Pertimbangan pemilihan serai tersebut dimaksudkan  sebagai  antisipasi  kemungkinan flavor  yang  ditimbulkan  oleh  penggunaan  minyak atsiri  masih  bisa  diterima  oleh  konsumen,  karena serai  merupakan  bahan  yang  banyak  digunakan untuk makanan dan minuman.
Tujuan penelitian adalah mendapatkan bahan alami  yang  dapat  menghambat  pertumbuhan A. flavus  dan  A.  parasiticus dan  dapat  digunakan dalam  pengawetan  komoditas  pertanian  yang  mu- dah  terkontaminasi  jamur  tersebut.  Tujuan  khusus penelitian  ini  menentukan  komponen  penyusun minyak  atsiri  yang  diperoleh  dari  metoda  distilasi air  dan  uap  dan  mengevaluasi  potensinya  sebagai anti-jamur pada A. flavus dan A. parasiticus .

## METODA PENELITIAN

## Bahan
Bahan  utama  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  serai  dapur  ( Cymbopogon
citratus ) yang  diperoleh  Pasar  Beringharjo, Yogyakarta. Mikroorganisme  yang  digunakan dalam penelitian ini adalah biakan murni A. flavus FNCC  6133  dan A.  parasiticus FNCC  6033  dari Laboratorium  Mikrobiologi  Pusat  Studi  Pangan Gizi UGM, Yogyakarta.

## Preparasi Minyak Atsiri
Batang  serai  ( Cymbopogon  citratus ) yang telah  dikeringkan  dan  dipotong-potong  sepanjang 1-2  cm,  kemudian  ditempatkan  pada  ketel  alat distilasi.  Ketel  dan  rangkaian  alat  distilasi  meru- pakan  peralatan  rancangan  dari  bengkel  alat Universitas  Gadjah  Mada.  Minyak  atsiri diperoleh dengan  distilasi  menggunakan  metode  uap  dan  air dengan  rasio  air  distilasi  dan  bahan  adalah  5 :1 (v/b). Waktu distilasi adalah 4 jam, dimulai ketika distilat  mulai  menetes  dengan  suhu  distilasi  96 o C. Hasil distilasi yang masih berupa campuran minyak dan  air  ditampung  kemudian  dipisahkan  menggu- nakan corong pemisah. Minyak yang diperoleh dari pemisahan  ditambah  Na 2 SO 4 anhidrat  (Merck, Germany),  sebanyak  1  g  untuk  setiap  10  mL minyak, untuk menangkap titik-titik air yang masih terikut,  kemudian  disaring  menggunakan  kertas Whatman  42  (GE  Healthcare,  UK).  Minyak  atsiri disimpan dalam botol gelap yang ditutup rapat dan disimpan pada suhu 4  C (Yanti, 2018). Hasil yang didapatkan  dihitung  rendemen  dan  dianalisa  sifat fisik dan kimianya meliputi, bobot jenis (Guenther, 1987),  indeks  refraksi,  kelarutan  dalam  alkohol (Guenther  1987),  angka  asam  dan  angka  ester (Sudarmadji, 2003)

## Identifikasi Komponen Kimia Minyak Atsiri
Identifikasi komponen kimia penyusun minyak atsiri serai dilakukan menggunakan Gas Chromatography-  Mass  Spectroscopy  (GC-MS). Minyak  atsiri  dianalisis  menggunakan  GCMS- QP2010S  (Shimadzu,  Japan)  dilengkapi  dengan kolom  Rtx-5MS  (panjang  30  m,  diameter  dalam 0,25  mm).  Sebanyak  0,1  µL  minyak  atsiri diinjeksikan  dalam  kolom  dengan  kondisi  operasi temperatur  injektor:  290 o C,  suhu  oven  dari  70 o C hingga 280 o C (4°C/menit), gas pembawa He dengan kecepatan  aliran  0,5  mL/menit  pada  290 o C,  split ratio 193, dan tekanan 13,7 kPa (Yanti et al ., 2018).

## Preparasi Spora Jamur
Strain mikrobia A. flavus dan A. parasiticus masing-masing  ditanam  pada  media Potato
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
DOI: 10.30598/jagritekno.2020.9.2.72
Dextrose  Agar (PDA)  (Merck,  Germany)  miring kemudian diinkubasi pada suhu 30 o C selama 7 hari. Spora dipanen dengan menambahkan 3 mL larutan 0,05%  tween  80  steril.  Permukaan  agar  miring digores  perlahan-lahan  hingga  spora  terlepas  dan diperoleh  stok  spora  dalam  bentuk  suspensi.  Stok spora  kemudian  diencerkan  menggunakan  larutan 0,05% tween 80 hingga diperoleh konsentrasi spora 10 7 spora/mL.  Penghitungan  konsentrasi  spora dihitung  menggunakan  haemocitometer  Neubauer (Assistent, Germany).

## Pengujian Aktivitas Penghambatan
Pengujian  aktivitas  antijamur Aspergillus flavus dan Aspergillus parasiticus dilakukan dengan food  poisoned  technique (Perrucci et  al .,  1994) menggunakan  media  PDA.  Minyak  atsiri  yang digunakan ditambahkan ke dalam medium bersuhu 50-55ºC  dan  kemudian  dituang  pada  petri  dish berdiameter  10  cm.  Dilakukan  variasi  konsentrasi minyak atsiri serai 0%; 0,01%; 0,02%; 0,04% dan 0,08%. Penambahan minyak atsiri ke dalam media dilakukan  dengan  cara  mencampurkan  sejumlah minyak  atsiri  sesuai  dengan  konsentrasi  yang diinginkan  dengan  penambahan  0,1  %  Tween  80 (Merck,  Germany)  sebagai  emulsifier,  kemudian campuran  tersebut  dituang  kedalam  media.  Jamur kemudian diinokulasikan ketika media sudah padat sebanyak  3  titik  per  petri.  Pengujian  dilakukan sebanyak  2  ulangan.  Kontrol  dibuat  dengan menumbuhkan jamur pada media dengan penambahan  0,1%  Tween  80  namun  tanpa penambahan  minyak  atsiri.  Setelah  itu  diinkubasi pada  suhu  30ºC.  Pengamatan  pertumbuhan  jamur dilakukan  setiap  hari  selama  7  hari  dengan  cara mengukur  diameter  koloni  jamur.  Persentase penghambatan  pertumbuhan  koloni  jamur  dapat dihitung  dengan  persamaan  berikut  (de  Billerbeck et al ., 2001).
Persentase Penghambatan = 𝐷𝑐−𝐷𝑜 𝐷𝑐 ×  100%
Keterangan: Dc = Diameter rata-rata koloni kontrol; Do = Diameter rata-rata koloni perlakuan

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Analisis Sifat Fisik dan Kimia Minyak Atsiri
Rendemen dan sifat-sifat minyak atsiri serai disajikan  pada  Tabel  1.  Rendemen  minyak  atsiri serai  yang  didapatkan  setelah  distilasi  air  dan  uap dalam  penelitian  ini  adalah  sebesar  1,82%  (db).
Sementara itu sifat fisik dan kimia dari minyak serai ini adalah sebagai berikut: bobot jenis minyak serai pada suhu 20 o C adalah 0,89, indeks refraksi minyak serai  pada  suhu  20 o C  berdasarkan  hasil  penelitan adalah 1,48, angka asam 11,04 mg KOH/g minyak dan larut dalam alkohol 95% (perbandingan 1:1).
Tabel 1. Sifat fisik dan kimia minyak serai
No Jenis analisis Hasil 1. Kadar air 51,42 % 2. Rendemen minyak 1,82 % 3. Bobot jenis pada suhu 20 o C 0,89 4. Indeks refraksi pada suhu 20 o C  1,48 5. Angka asam 11,04 * 6. Kelarutan dalam alkohol Larut, 1:1 **
Keterangan:  *)  dalam  mg  KOH/g  minyak;  **)  larut dalam alkohol 95%, dengan perbandingan 1:1
Bobot  jenis  merupakan  salah  satu  kriteria penting  dalam  menentukan  mutu  dan  kemurnian minyak atsiri. Bobot jenis dipengaruhi oleh derajat ketidakjenuhan minyak dan berat molekul rata-rata senyawa  penyusunnya.  Nilai  bobot  jenis  minyak atsiri  berkisar antara 0,696-1,188  pada  suhu  15 o C, dan  pada  umumnya  nilai  tersebut  lebih  kecil  dari 1,000 (Guenther, 1987).
Indeks  refraksi  merupakan  perbandingan antara  sudut  sinar  datang  dengan  sudut  sinar  bias bila  seberkas  sinar  jatuh  pada  suatu  larutan.  Jika minyak  mengandung  air,  maka  nilai  indeks refraksinya  rendah  (Guenther,  1987).  Karena banyak minyak atsiri larut dalam alkohol dan jarang yang  larut  air,  maka  kelarutannya  dapat  dengan mudah  diketahui  dengan  menggunakan  alkohol pada berbagai tingkat konsentrasi. Biasanya minyak yang kaya komponen oxygenated lebih mudah larut dalam alkohol daripada yang kaya akan terpen.
Kelarutan minyak atsiri dapat berubah karena pengaruh  umur.  Hal  ini  disebabkan  karena  proses polimerisasi menurunkan daya kelarutan, sehingga untuk melarutkannya diperlukan konsentrasi alkohol  yang  lebih  tinggi.  Kondisi  penyimpanan yang  kurang  baik  juga  dapat  mempercepat polimerisasi.  Faktor-faktor  seperti  cahaya,  udara dan  adanya  air  biasanya  menimbulkan  pengaruh yang tidak baik (Guenther, 1987). Pengukuran sifat- sifat minyak atsiri dimaksudkan untuk menentukan terlebih dahulu sifat dan karakter minyak atsiri yang digunakan dalam penelitian ini.
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)

## Gambar 1. Kromatogram hasil pengujian minyak atsiri serai dengan menggunakan GC-MS

## Komponen Kimia Minyak Serai
Kromatogram  GC-MS  dari  minyak  atsiri serai yang dihasilkan disajikan pada Gambar 1 dan komposisi  komponen  kimia  minyak  atsiri  serai disajikan Tabel 2.
Tabel 2. Komponen kimia minyak serai
Komponen kimia Persentasi (%) 1 β myrcene 3,98 2 1,8 cineole 0,11 3 Cis ocimene 0,31 4 1,3,6-Octatriene 3,7-dimethyl 0,16 5 Myrtenol 0,03 6 L linalool 0,15 7 1,4- hexadiene 0,36 8 Citronella 0,23 9 Phellandral 1,08 10  Rose furan epoksida 0,05 11  Carane 4,5 epoxy 2,06 12  Oxirane caroxaldehid 0,02 13  z-citral 34,05 14  Citral 53,77 15  Dimetil pinate 0,03 16  Geraniol asetat 0,05 17  Cyclohexane 0,20 18  Trans caryophyllene 0,51 19  α-bergomotene 0,34 20  α-guaiene 0,11 21  Allo aromadendrene 0,15 22  α-humulene 0,18 23  α-gorjunene 0,08 24  Germacrene 0,08 25  Delta cadinene 0,23 26  Juniper champor 1,66
Berdasarkan  Gambar  1  dan  Tabel  2,  dapat dilihat terdapat 26 komponen kimia yang menyusun minyak serai. Komponen utama dalam minyak serai adalah  citral  (53,77%)  dan  z-citral  (34,05%). Menurut  Violon et  al. (1994),  citral  merupakan salah  satu  komponen  yang  memiliki  aktivitas antifungal  tertinggi  diantara  kelompok  terpenoid. Citral diduga memiliki aktivitas cytotoxic (Bakkali et al ., 2008). Pada sel eukarotik, minyak atsiri dapat menyebabkan  terjadinya  depolarisasi  membran mitokondria dengan menurunkan potensial membran  sehingga  mempengaruhi  siklus  ion  Ca ++ serta siklus ionik lainnya dan menurunkan gradient pH  yang  mempengaruhi  pompa  proton  dan pembentukan ATP.
Neral  atau  z-citral  yang  merupakan  isomer citral  dan  komponen  terbesar  kedua  setelah  citral pada  minyak  serai,  dilaporkan  memiliki  aktivitas anti-jamur. Wuryatomo et al . (2003), menyebutkan bahwa neral konsentrasi 15 µL/L dapat menghambat  pertumbuhan P.  digitatum  dan  P. italicum serta memiliki aktivitas fungisidal terhadap G. candidum pada konsentrasi yang sama.
Selain  citral,  keberadaan  linalool  dalam minyak  serai  juga  diduga  memiliki  pengaruh terhadap  aktivitas  anti-jamur.  Linalool  yang merupakan  komponen  utama  minyak  basil,  dapat menghambat pertumbuhan B. cereus , E. coli dan L. monocytogenes pada  konsentrasi  20.000  ppm (Gutierrez et al ., 2008). Sedangkan penelitian oleh Cantore et al . (2004), menyatakan bahwa minyak C. sativum dengan komponen utama linalool memiliki aktivitas  bakterisidal  yang  cukup  tinggi  terhadap bakteri gram positif dan gram negatif yang diujikan.
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
Minyak biji Coriandrum sativum L. yang memiliki komponen  utama  linalool  dilaporkan  dapat menghambat , E. coli , L. monocytogenes , S. aureus dan S.  cerevisiae pada  konsentrasi  0,13-0,47% terhadap P.  fragi dan S.  typhimurium tidak menunjukkan aktifitas antimikrobia (Delaquis et al ., 2002). Dalam keadaan murni, linalool 12,5 µg/mL dapat menghambat pertumbuhan T. mentagrophytes, meskipun  tidak  sekuat  citral, dengan diameter penghambatan 11 mm (Shigeharu et  al .,  2006).  Delaquis et  al. (2002)  menyebutkan bahwa fraksi dari minyak cilantro yang mengandung linalool mampu menghambat pertumbuhan Pseudomonas  fragi,  Escherecia  coli dan Salmonella Typhimurium
Pada  minyak  serai  terdapat  komponen  1,8 cineole.  Penelitian  oleh  Vilela et  al .  (2009), menunjukkan bahwa 1,8-cineole dengan konsentrasi  1,3492  µL  hanya  dapat  menghambat 5%  pertumbuhan A.  flavus dan A.  parasiticus . Komponen 1,8-cineole memiliki konsentrasi minimal  penghambatan  2,5  mg/mL  dan  1,25 mg/mL terhadap A. flavus dan A. niger (Shin, 2003). Sedangkan terhadap T. mentagrophytes, 50 µg/mL 1,8 cineole hanya memiliki zona penghambatan 13 mm (Shigeharu et al ., 2006).
Berdasarkan  penelitan  Tzortzakis  (2007), minyak serai memiliki 9 komponen kimia, dengan komponen utama berupa isomer citral, yang terdiri dari geranial sebanyak 40,79% dan neral sebanyak 31,85%,  sementara  dalam  penelitian  ini  minyak serai yang didapatkan mengandung citral (53,77%)
sebagai  komponen  tertinggi,  diikuti  z  citral (34,05%).  Perbedaan  komponen  kimia  penyusun minyak  serai  dan  komposisinya,  selain  karena perbedaan varietas dapat disebabkan oleh perbedaan  kondisi  geografis  dan  iklim  tempat tanaman tumbuh atau perbedaan spesifikasi alat dan kondisi pengujian.

## Aktivitas Antijamur Minyak Serai
Hasil  pengujian  aktivitas  antijamur  minyak serai  pada  variasi  konsentrasi  yang  diujikan disajikan foto pertumbuhan jamur pada Gambar 2a dan 2b dan ukuran diameter koloni Gambar 3a dan 3b. Sedangkan persentase penghambatan aspergillus  oleh  minyak  atsiri  serai  setelah  7  hari disajikan pada Tabel 3.
Gambar  3a  dan  3b  menunjukkan  pola pertumbuhan A.  flavus dan A.  parasiticus pada media  pertumbuhan  dengan  penambahan  variasi konsentrasi minyak atsiri daun serai selama 7 hari pengamatan.  Penundaan  pembentukan  miselia terjadi mulai konsentrasi minyak atsiri 0,01% (100 ppm).  Semakin  tinggi  konsentrasi  minyak  atsiri yang  ditambahkan  maka  germinasi  spora  akan semakin terhambat.  Pada  konsentrasi  0,02  %  (200 ppm) A.flavus masih  mengalami  penundaan pertumbuhan spora sampai 2 hari berikutnya. Pada konsentrasi 0,8 % (800 ppm) terlihat bahwa kedua jenis  jamur  tidak  mampu  tumbuh  selama  7  hari pengamatan.
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
DOI: 10.30598/jagritekno.2020.9.2.72
Gambar 2b. Uji aktivitas penghambatan pertumbuhan A. parasiticus oleh minyak serai
Tabel 3.  Aktivitas  penghambatan  pertumbuhan A.  flavus dan A.  parasiticus setelah  7  hari  pada  berbagai konsentrasi minyak serai
Konsentrasi minyak (%) A. flavus A. parasiticus Diameter koloni (cm) Persentase penghambatan (%) Diameter koloni (cm) Persentase penghambatan (%) 0 7,50 0 a *) 7,45 0 a *) 0,01 6,27 16,44 b 6,63 10,96 b 0,02 3,41 54,56 c 5,02 32,66 c 0,04 2,48 66,89 d 2,08 72,15 d 0,08 0 100,00 e 0 100,00 e
Keterangan: *) Tanda huruf yang sama dalam satu kolom menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata pada α = 0,05
Pada  konsentrasi  terendah  yang  diujikan, yaitu  0,01%  (100  ppm),  pertumbuhan  jamur A. flavus dan A.  parasiticus telah  terhambat  sebesar 16,44%  dan  10,96%.  Semakin  tinggi  konsentrasi minyak serai yang digunakan, persentase penghambatan  pertumbuhan  jamur  semakin  besar. Pada konsentrasi minyak serai sebesar 0,08% (800 ppm), A. flavus dan A. parasiticus dapat dihambat 100% pertumbuhannya selama 7 hari pengamatan. Hasil  ini  sesuai  dengan  yang  didapatkan  oleh Tzortzakis  (2007),  yang  menyebutkan  bahwa minyak serai dengan komponen utama isomer citral berupa  geranial  dan  neral  mampu  menghambat 100%  pertumbuhan C.  coccodes , C.herbarum , R. stolonifera , dan A.  niger selama  10  hari  pada konsentrasi  500  ppm.  Kemampuan  penghambatan
minyak  serai,  disebabkan  oleh  komponen  kimia penyusun minyak tersebut. Citral yang merupakan komponen  utama  minyak  serai  memiliki  aktivitas antijamur yang tinggi terhadap T. mentagrophytes , yaitu  dapat  menghambat  100%  pertumbuhan  pada inkubasi  suhu  28 o C  selama  10  hari  dengan konsentrasi  0,1  mg/mL  (100  ppm)  (Park et  al ., 2009) dan pada konsentrasi 3,13 µg/mL (3,13 ppm) dapat  menghambat  pertumbuhan  jamur  tersebut sampai  diameter  60  mm  (Shigeharu et  al .,  2006). Pada  konsentrasi  6  µL/L  (6  ppm)  citral  dapat menghambat  pertumbuhan P.  italicum tetapi  tidak bersifat  fungisidal,  sedangkan  citral  15  µL/L  (15 ppm) bersifat fungisidal terhadap P. digitatum and G.  candidum (Wuryatmo et  al .,  2003).  Penelitian oleh López-Malo et al . (2005), menunjukkan bahwa
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
DOI: 10.30598/jagritekno.2020.9.2.72
citral  dapat  menghambat  pertumbuhan A.  flavus selama 60 hari dengan konsentrasi 1400-1800 ppm pada  kondisi  suhu  25 o C,  pH  3,5  dan  4,5,  serta a w 0,95 dan 0,99.
Gambar 3a.  Pengaruh  konsentrasi  minyak  serai terhadap pertumbuhan A. flavus
Gambar 3b.  Pengaruh  konsentrasi  minyak  serai terhadap pertumbuhan A. parasiticus
Aktivitas  antimikrobia  pada  minyak  atsiri dapat  disebabkan  oleh  komponen  tunggal  atau sinergisitas  maupun  antagonisitas  komponen- komponennya.  Pada  penelitian  ini,  minyak  serai yang  digunakan  menunjukkan  kadar  citral  yang tinggi  (53,77%)  dan  z-citral  (34,05%).  Kedua komponen  tersebut  mempunyai  sifat  anti  jamur yang tinggi dibandingkan terpen yang lain (Violon, 1994; Wuryatmo, 2003). Sehingga kedua senyawa inilah yang sangat mungkin menyebabkan sifat anti jamur  dari  minyak  serai,  sehingga  mampu menghambat  pertumbuhan  jamur A.  flavus dan A. parasiticus .
Selain itu linalool dan 1,8 cineole yang juga terdapat dalam minyak atsiri serai juga punya sifat anti  jamur  (Delaquis et  al .,  2002;  Guiterrez et  al ., 2008;  Vilela et  al .,  2010).  Walaupun  linalool  dan 1,8  cineole    merupakan  komponen  minor  pada minyak serai, namun menurut Burt (2004) pengaruh sinergis dari komponen minor dapat menjadi bagian penting  pada  aktifitas  antimikrobia.  Kombinasi citral  dan  linalool  dalam  perbandingan  tertentu dilaporkan dapat meningkatkan aktivitas antimikrobia  (Belletti et  al .,  2010).  Mengingat kandungan  linalool  dalam  penelitian  ini  hanya 0,15 %, maka berdasarkan penelitian-penelitian lain diduga efek  anti jamur yang  dihasilkan serai  yang digunakan dalam penelitian ini adalah karena efek kombinasi antara citral dan linalool.
Mekanisme terjadinya penghambatan pertumbuhan  jamur  oleh  minyak  atsiri  disebabkan oleh  komponen  minyak  atsiri  dapat  melewati membran  sel,  berikatan  dengan  enzim  dan  protein membran serta memghasilkan fluks proton ke arah eksterior sel yang mempengaruhi perubahan dalam sel  dan  akhirnya  menyebabkan  kematian  sel (Omidbeygi et  al. ,  2007).  Menurut  Marino et  al. (2001), komponen minyak atsiri mampu terpenetrasi  ke  dalam  sel  dan  menggangu metabolisme  sel.  Selain  itu,  Chang et  al .  (2001) menyatakan bahwa komponen minyak atsiri mampu menggangu membran sel dan bereaksi dengan sisi aktif  enzim  atau  berperan  sebagai  carier  H + . Tatsadjieu et al. (2009) mengemukakan bahwa pada sistem  transport  sel,  untuk  memompa  proton dilakukan  oleh  H + -ATPase  yang  sangat  penting untuk regulasi pH internal sel jamur. Enzim ATPase menjaga homeostasis sel dan stabilitas osmotik sel dengan  mengatur  konsentrasi  ion  di  dalam  sel. Minyak  atsiri  mampu  berikatan  dengan  enzim ATPase  sehingga  menyebabkan  sistem  transport terganggu dan tidak dapat memompa proton keluar dari  sel.  Pada  kondisi  normal,  substrat  glukosa dengan cepat dibawa oleh sistem transport dibantu dengan  pengeluaran  proton  dari  sel  oleh  ATPase pada  membran  plasma  sehingga  terjadi  penurunan pH  supensi  sel  tersebut.  Tatsadjieu et  al. (2009), menyatakan bahwa minyak atsiri dari daun Lippia rugosa mampu  menghambat  aktivitas  enzim ATPase sehingga tidak terjadi penurunan pH pada suspensi sel karena sistem transport terganggu.

## KESIMPULAN
Komponen  kimia  yang  dapat  teridentifikasi dari minyak serai ( Cymbopogon citratus ) adalah 26 jenis  senyawa,  dengan  komponen  utama  citral
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
(53,77%)  dan  z-citral  (34,05  %).  Sifat  anti-jamur dari  minyak  serai  dapur  ini,  diduga  karena  peran citral  yang  ada  di  dalam  minyak  atsiri  tersebut. Penambahan  minyak  serai  ( C . citratus )  pada konsentrasi rendah (100 ppm) sudah menunjukkan kemampuan  penghambatan  terhadap  pertumbuhan jamur  dan  pada  konsentrasi  0,08%  (800  ppm) memiliki  kemampuan  menghambat  pertumbuhan jamur sebesar 100%. Untuk penelitan lebih lanjut, perlu diuji komponen mana yang berperan sebagai anti  jamur  pada A.  flavus  dan  A.  parasiticus ,  dan komponen  mana  pada  minyak  serai  dapur  yang lebih  berperan  sebagai  pemberi  aroma.  Isolasi komponen tersebut perlu dilakukan untuk mendapatkan  anti  jamur  yang  baik,  dengan  aroma yang tidak terlalu kuat.

## DAFTAR PUSTAKA
Bakkali,  F.,  S.  Averbeck,  D.  Averbeck,  and  M. Odaomar.  2008.  Biological  effects  of essential oils – A review. Food and Chemical Toxicology 46: 446-475. DOI: 10.1016/j.fct.2007.09.106
Bluma,  R.V.  and  M.G.  Etcheverry.  2007.
Application  of  essential oils  in maize grain: Impact  on Aspergillus section Flavi growth parameters and aﬂatoxin accumulation. Food Microbiology 25: 324-334. DOI: 10.1016/j.fm.2007.10.004
Belletti,  N.,  S.S.  Kamdem,  G.  Tabanelli,  R.
Lanciotti, and F. Gardini. 2010. Modeling of combined  effects  of  citral,  linalool  and  β- pinene used against Saccharomyces cerevisiae in citrus-based beverages
subjected  to  a  mild  heat  treatment. International Journal of Food Microbiology 136:  283-289.  DOI:  10.1016/j.ijfoodmicro. 2009.10.030
Cantore,  P.L.,  N.S.  Iacobellis,  A.  de  Marco,  F.
Capasso, and F. Senatore. 2004. Antibacterial activity  of Coriandrum  sativum L.  and Foeniculum  vulgare Miller  var.  vulgare (Miller) essential oils. Journal of Agriculture and  Food  Chemistry 52:  7862-7866. DOI: 10.1021/jf0493122
Chang,  H.T.,  Y.H.  Cheng,  C.L.  Wu,  S.T.  Chang, T.T.  Chang,  and  Y.C.  Su.  2008.  Antifungal activity  of  essential  oil  and  its  constituents from Calocedrus macrolepis var. formosana Florin  leaf  against  plant  pathogenic  fungi. Bioresource  Technology 99:  6266-6270. DOI: 10.1016/j.biortech.2007.12.005
Davari, E., M. Mohsenzadeh, G. Mohammadi, and R.  Rezaeian-Doloei.  2015.  Characterization of  aflatoxigenic Aspergillus  flavus and A. parasiticus strain  isolates  from  animal feedstuffs in  northeastern  Iran. Iranian Journal of Veterinary Research 16: 150-155. Delaquis, P.J., K. Stanich, B. Girard, and G. Mazza. 2002.  Antimicrobial  activity  of  individual and  mixed  fractions  of  dill,  cilantro, coriander  and  eucalyptus  essential  oils. International Journal of Food Microbiology
74: 101-109. DOI: 10.1016/s0168- 1605(01)00734-6
De  Billerbeck,  V.G.,  C.G.  Roques,  J.M.  Bessière,
J.L. Fonvieille, and R. Dargent. 2001 . Effect of Cymbopogon  nardus (L)  W.  Watson
essential oil on the growth and morphogenesis of Aspergillus niger. Canadian Journal of Microbiology 47: 9-17. DOI: 10.1139/w00-117 Guenther,  1987 . Minyak  Atsiri  Vol  I-IV .
Terjemahan Ketaren. Jakarta: UI Press.
Gutierrez, J., C. Barry-Ryan, and P. Bourke. 2008.
The antimicrobial efﬁcacy of plant essential oil  combinations  and  interactions  with  food ingredients. International  Journal  of  Food Microbiology 124: 91-97. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2008.02.028
López-Malo,  A.,  S.M.  Alzamora,  and  E.  Palou. 2005. Aspergillus  flavus growth  in  the presence  of  chemical  preservatives  and naturally
occurring antimicrobial compounds. International  Journal  of  Food Microbiology 99: 119-128. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2004.08.010
Marino,  M.,  C.  Bersani,  and  G.  Comi.  2001.
Impedance  measurements  to  study  the antimicrobial  activity  of  essential  oils  from Lamiaceae  and  Compositae. International Journal  of  Food Microbiology 67:  187-195.
DOI: 10.1016/s0168-1605(01)00447-0
Omidbeygi,  M.,  M.  Barzegar,  Z.  Hamidi,  and  H. Naghdibadi.  2007.  Antifungal  activity  of thyme,  summer  savory,  and  clove  essential oils  against Aspergillus  flavus in  liquid medium and tomato paste . Food Control 18: 1518-1523.  DOI:  10.1016/j.foodcont.2006. 12.003
Tatsadjieu, N.L., P.M.J. Dongmo, M.B. Ngassoum, F-X.  Etoa,  and  C.M.F.  Mbofung.  2009. Investigations  on  the  essential  oil  of Lippia rugosa from Cameroon for its potentials use as  antifungal  agents  against Aspergillus
Vol. 9, No. 2, 72-80, Th. 2020 ISSN 2302-9218 (Print) ISSN 2620-9721 (Online)
flavus Link  ex fries. Food Control 20:  161- 166. DOI: 10.1016/j.foodcont.2008.03.008 Park,  M.J.,  K.S.  Gwak,  I.  Yang,  K.W.  Kim,  E.B. Jeung,  J.W.  Chang,  and  I.G.  Choi.  2009. Effect  of  citral,  eugenol,  nerolidol  and  α- terpineol  on  the  ultrastructural  changes  of Trichophyton  mentagrophytes . Fitoterapia 80:  290-296.  DOI:  10.1016/j.fitote.2009. 03.007
Perrucci, S., F. Mancianti, P.L. Cioni, G. Flamini, I.
Morelli,  and  G.  Macchioni.  1994.  In  vitro antifungal  activity  of  essential  oil  against some  isolate  of Microsporum  canis and Microsporum  gypseum . Planta  Medica 60: 184-187. DOI: 10.1055/s-2006-959448
Sardjono, E.S. Rahayu, A.D. Hocking, and J.I. Pitt.
1992.  Mycroflora  of  cereals  and  nuts  from Indonesia.  Proc.  the  4th  ASEAN  Food Conference, Jakarta.
Shigeharu, I., U. Katsuhisa, and A. Shigeru. 2006.
Vapor  activity  of  72  essential  oils  against  a Trichophyton  mentagrophytes . Journal  of Infection  and  Chemotherapy 12:  210-216.
DOI: 10.1007/s10156-006-0449-8.
Shin,  S.  2003.  Anti-aspergillus  activities  of  plant essential  oils  and  their  combination  effects with  ketoconazole  or  amphotericin  B. Archives of Pharmacal Research 6: 389-393. DOI: 10.1007/BF02976696
Tripathi,  A.,  N.  Sharma,  and  V.  Sharma.  2009.  In vitro efﬁcacy of Hyptis suaveolens L. (Poit.) essential oil on growth and morphogenesis of Fusarium oxysporum f.sp. gladioli (Massey) Snyder  &  Hansen. World  Journal  of Microbiology  and  Biotechnology 25:  503-
512.
Tzortzakis,  N.G.  and  C.D.  Economakis.  2007.
Antifungal activity of lemongrass ( Cympopogon  citratus L.)  essential  oil
against key postharvest pathogens. Innovative  Food  Science  &  Emerging Technologies 8: 253-258. DOI: 10.1016/j.ifset.2007.01.002 Vilela,  G.R.,  G.S.  de  Almeida,  M.A.B.R.  D’Arce,
M.H.D.  Moraes,  J.O.  Brito,  M.F.G.F.  da Silva,  S.C.  Silva,  S.M.S.  Piedade,  M.A. Calori-Domingues,  and  E.M.  da  Gloria. 2009.  Activity  of  essential  oil  and  its major compound,  1,8-cineole,  from Eucalyptus globulus Labill.,  against  the  storage  fungi Aspergillus  flavus Link  and Aspergillus parasiticus Speare. Journal  of  Stored Products  Research 45:  108-111.  DOI: 10.1016/j.jspr.2008.10.006
Violon,  C.  and  J.P.  Chaumont.  1994.  Antifungal properties  of  essential  oils  and  their  main components upon Cryptococcus neoformans .
Mycopathologia 128: 151-153. DOI: 10.1007/BF01138476
Wuryatmo,  E.,  A.  Klieber,  and  E.S.  Scott.  2003.
Inhibition of citrus postharvest pathogens by vapor  of  citral  and  related  compounds  in culture. Journal  of  Agriculture  Food
Chemistry 51: 2637-2640. DOI: 10.1021/jf026183l Tatsadjieu, N.L., P.M.J. Dongmo, M.B. Ngassoum,
F-X.  Etoa,  and  C.M.F.  Mbofung.  2009. Investigations  on  the  essential  oil  of Lippia rugosa from Cameroon for its potentials use as  antifungal  agents  against Aspergillus flavus Link  ex fries. Food Control 20:  161- 166. DOI: 10.1016/j.foodcont.2008.03.008
Yanti,  R.,  P.  Wulandari,  Y.  Pranoto,  dan  M.N.
Cahyanto.  2018  Karakterisasi,  identifikasi dan uji aktivitas anti jamur minyak atsiri daun jeruk  purut  ( Citrus  hystrix )  terhadap Aspergillus. Jurnal  Teknologi  Pertanian Unsrat 8: 8-1.
Copyright © 2020 Rini Yanti, Hermina Nurdiawati, Muhammad N. Cahyanto, Yudi Pranoto
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License .