## OPTIMASI EKSTRAKSI DAN KARAKTERISASI KOLAGEN DARI GELEMBUNG RENANG IKAN CUNANG DENGAN METODE ASAM-HIDRO-EKSTRAKSI

## Extraction Optimization and Characterization of Collagen from Yellow Pike Conger Swimbladder  with Acid-Hydro-Exctraction Method
Fernandy Djailani*, Wini Trilaksani,  Tati Nurhayati Departemen Teknologi Hasil Perairan, Fakultas perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor Institut Pertanian Bogor, Kampus IPB Darmaga, Jalan Agatis, Bogor 16680 Jawa Barat Telepon (0251) 8622909-8622906, Faks. (0251) 8622915 *Korespondensi: fernandydjailani@gmail.com
Diterima: 10 Juni 2016/ Review: 15 Juli 2016/ Disetujui: 16 Agustus 2016
Cara sitasi: Djailani F, Trilaksani W, Nurhayati T. 2016. Optimasi ektraksi dan karakterisasi kolagen dari gelembung renang ikan cunang dengan metode asam-hidro-ekstraksi. Jurnal Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia 19(2): 156-167.
Abstrak
Gelembung renang merupakan salah satu hasil samping produk perikanan yang potensial sebagai bahan baku kolagen. Penelitian ini bertujuan untuk menentukan optimasi hidro-ekstraksi dan karakterisasi kolagen. Optimasi hidro-ekstraksi kolagen ditentukan menggunakan desain Box-behken metode respon permukaan dengan tiga variabel: konsentrasi CH 3 COOH, waktu perendaman CH 3 COOH dan waktu hidro- ekstraksi terhadap respon rendemen. Kolagen hasil hidro-ekstraksi dikarakterisasi berdasarkan kandungan asam amino, SDS-PAGE, FT-IR dan DSC. Hasil menunjukkan bahwa variabel konsentrasi berpengaruh secara signifikan terhadap rendemen. Kondisi ekstraksi optimal  yaitu kombinasi variabel konsentrasi asam asetat 0,1 M; waktu perendaman asam asetat 1 jam  dan waktu hidro ekstraksi 1 jam menghasilkan rendemen tertinggi yakni 63,35 %. Kolagen hasil ekstraksi digolongkan sebagai kolagen tipe I berdasarkan kandungan asam amino, pola elektroforesis dan spektra fourier transform infrared (FTIR). Suhu transisi gelasi kolagen yakni 67,23 o C, menunjukan kestabilan termal yang tinggi sehingga dapat diaplikasikan pada industri kosmetik dan nutrasetika.
Kata kunci: gelembung-renang, hido-ekstraksi, karakterisasi, kolagen, optimasi

## Abstract
Swim bladder is one of marine potential byproducts for alternative source of collagen. This study aimed to optimize hydro-extraction and characterized collagen. Extraction optimization of collagen was determined using Box-behnken design response surface method with three variables: CH 3 COOH concentration, soaking time and extraction time to yield response. Hydro-extraction collagen was characterization based on the amino acid content, SDS-PAGE, FT-IR and DSC. Acording to the result, the concentration had significantly influence yield. Optimum extraction conditions were variable combinations of acetic acid concentration of 0.1 M, for 1 h and hydro-extraction time of 1 h to produce the highest yield 63.35%. collagen was classified as type I collagen by amino acid content, electrophoresis patterns and fourier transform infrared (FTIR) spectra. The glass transition of collagen was 67.23 o C, showed high thermal stability that can be applied to the cosmetics industry and nutraceutical.
Keywords: characterization, collagen, hydro-extraction, optimization, swim-bladder
Available online: journal.ipb.ac.id/index.php/jphpi

## PENDAHULUAN
Kolagen adalah protein struktural utama dalam jaringan ikat vertebrata dan
jumlahnya sekitar 30 % dari total protein hewani (Muyonga et al. 2004; Sinthusamran et al. 2013). Zat ini merupakan komponen
JPHPI 2016, Volume 19 Nomor 2
Optimasi Ekstraksi dan Karakterisasi Kolagen, Djailani et al.
yang pada kenyataanya menjadi buangan yang kurang termanfaatkan dengan baik dan cenderung mencemari lingkungan (Trilaksani et al. 2007). Salah satu usaha yang dapat dilakukan untuk memberikan nilai tambah adalah memanfaatkan gelembung renang sebagai kolagen. Fernandez et al. (2008) menyatakan bahwa kolagen yang berasal dari gelembung renang (hasil samping pengolahan ikan) dapat dijadikan alternatif karena aman digunakan dan bisa diterima oleh semua golongan. Kandungan kolagen dari gelembung renang menurut Leach (1966) mencapai 98% dalam basis kering. Ikan cunang ( Congresox talabon ) termasuk ikan yang memiliki gelembung renang cukup besar dan beratnya 0,6 % dari berat total ikan. Ikan ini dimanfaatkan sebagai bahan baku kerupuk dan ikan kaleng (KKP 2015).
Penelitian mengenai ekstraksi kolagen dari gelembung renang ikan menggunakan metode ASC ( Acid Soluble Collagen ) menghasilkan rendemen berbeda-beda. Penelitian Liu et al. (2012) menghasilkan kolagen 59 % basis kering dari ekstrak kolagen dari ikan herbivora big head carp (Aristichtus nobilis). Penelitian Sintusamran et al. (2013) menghasilkan kolagen 85.3 % basis kering dari ikan kakap putih, Kaewdang et al. (2014) melaporkan hasilnya sebesar 1,07% basis kering dari tuna sirip kuning. Hasil rendemen yang berbeda dipengaruhi oleh metode dan kondisi ekstraksi yang digunakan (Wang et al. 2008), sehingga optimasi ekstraksi diperlukan untuk menghasilkan kolagen dengan rendemen terbanyak. Ektraksi kolagen umumnya dilakukan dengan metode acid soluble collagen (ASC) dan pepsin soluble colagen (PSC). Pada penelitian ini dilakukan menggunakan kombinasi metode ASC dengan hidro-ekstraksi. Metode hidro- ekstraksi telah dilakukan pada ekstraksi kolagen dari sisik ikan nila dengan  cara merendam sisik dalam akuabides pada
utama dari jaringan ikat, otot, gigi, tulang dan kulit (Potaros et al. 2009). Kolagen terdiri dari tiga rantai polipeptida triplehelix berukuran hampir sama dan setiap rantai mengandung sekitar 1000 asam amino dengan panjang rata-rata 300 nm dan diameter 1,4 nm. Urutan primer asam amino berulang yaitu posisi ketiga selalu ditempati glisin dengan urutan rantai polipeptidanya adalah Gly-X-Y, X dan Y merupakan prolin dan hidroksiprolin (Whitford 2005). Kolagen dimanfaatkan secara luas baik di bidang farmasi, pangan dan kosmetik (Liu et al. 2009).
Kolagen banyak diproduksi dari kulit dan tulang hewan darat misalnya: sapi, babi dan unggas (Santos et al. 2013). Bahan baku tersebut terkadang menimbulkan reaksi negatif karena hewan-hewan tersebut ada yang terkena wabah penyakit sapi gila, penyakit mulut dan kuku (PMK), dan flu burung (Liu et al. 2015). Kolagen dari babi juga ditolak oleh pemeluk agama islam karena tidak halal (Rengenstein et al. 2003) dan kolagen yang bersumber dari sapi juga menjadi permasalahan tersendiri bagi pemeluk agama hindu (Kasankala et al.
2007). Alternatif sumber kolagen diperlukan untuk mengatasi masalah tersebut. Menurut Zhang et al. (2007) ikan dan hewan perairan lain dapat dijadikan alternatif sumber kolagen. Ekstraksi kolagen dari hewan perairan di Indonesia telah banyak dilakukan,  seperti: Alhana et al. (2015)
melakukan ekstraksi kolagen dari teripang gama dan menghasilkan rendemen kolagen
1,50% (bb), Wulandari et al. (2015) melakukan ekstraksi kolagen dari kulit ikan gabus dan menghasilkan rendemen kolagen 16 % (bk), Astiana et al. (2016) melakukan ekstraksi kolagen dari kulit ikan ekor kuning dan menghasilkan rendemen 18,4% (bk). Ekstraksi kolagen dari gelembung renang ikan  masih jarang dilakukan. Gelembung renang biasa dikenal sebagai gelembung udara, gelembung suara atau fish maws
suhu 20 atau 50 o C menggunakan waterbath selama 2 jam. Metode hidro-ekstraksi memiliki beberapa keuntungan antara lain waktu lebih singkat, sedikit memerlukan peralatan laboratorium, dapat diproduksi secara kontinu, rendemen tinggi, limbah sedikit dan biaya produksi lebih rendah (Huang et al. 2016).  Optimasi ekstraksi kolagen dengan modifikasi metode ASC dan kombinasi hidro-ekstraksi diperlukan untuk menghasilkan rendemen kolagen terbanyak. Penelitian ini bertujuan untuk melakukan optimasi ekstraksi kolagen dan juga mengkarakterisasi kolagen hasil optimasi.

## BAHAN DAN METODE Bahan dan Alat
Bahan baku yang digunakan pada penelitian ini adalah gelembung renang ikan cunang yang diperoleh dari unit pengolahan kerupuk ikan, Indramayu, Jawa Barat. Bahan lain yang digunakan dalam penelitian ini antara lain NaOH (Merck), asam asetat (Merck), akuades, akuabides dan bahan untuk analisa. Peralatan yang digunakan yaitu Freeze-dryer (Eyela FDU-1200 Japan), Fourier Transform Infrared Spectroscopy (Bruker Tensor 37 German), High Performance
Liquid Chromatography (Water Coorporation USA), Spektroskopi (DR 5000 German), Differential Scanning Calorimetry (DSC-60) merek Shimadzu, stirrer (Mag-Mixer Yamato Scientific. Co. Ltd Tokyo Japan), dan magnetic stirrer ukuran 5 cm.

## Metode Penelitian
Penelitian ini dilakukan dalam dua tahap yaitu, 1) Optimasi ekstraksi kolagen meliputi optimasi kombinasi konsentrasi asam asetat, waktu perendaman asam asetat dan waktu hidro-ekstraksi. 2) Karakterisasi kolagen meliputi komposisi asam amino, berat molekul, gugus fungsi dan suhu termal.
Optimasi ekstraksi kolagen (modifikasi Liu et al. 2015)

## Preparasi Gelembung Renang
Gelembung renang segar diperoleh dari hasil samping pengolahan industri kerupuk di Indramayu dan di transportasikan ke laboratorium menggunakan coolbox yang berisi es dengan perbandingan gelembung renang dan es 1:3 (b/b). Gelembung renang dibekukan dan disimpan pada suhu -20 o C sebelum digunakan. Waktu penyimpanan gelembung renang tidak melewati satu bulan.
Pretreatment gelembung renang dalam larutan NaOH Gelembung renang  beku dilelehkan dengan air mengalir sebelum digunakan, kemudian dibersihkan dari kotoran dengan air dingin selanjutnya dipotong kecil- kecil (0,5x0,5 cm 2 ) menggunakan pisau. Gelembung renang yang sudah dipreparasi kemudian dicuci dengan akuades dingin selanjutnya direndam dalam larutan NaOH dengan konsentrasi 0,15 M selama 10 jam. Larutan NaOH setiap 2 jam sekali diganti. Rasio antara kulit dan larutan NaOH adalah 1:20 (b/v). Gelembung renang hasil preparasi dinetralkan dengan akuades dingin.

## Ekstraksi kolagen dengan kombinasi metode Asam-hidro-ekstraksi
Gelembung renang hasil preparasi diekstrak menggunakan kombinasi metode ASC (direndam dalam larutan asam asetat berdasarkan perlakuan: konsentrasi 0,1, 0,3 dan 0,5 M, waktu perendaman asam asetat 1,
2 dan 3 jam dengan perbandingan asam asetat dan sampel 10:1). Gelembung renang hasil perendaman asam asetat dinetralkan dengan akuabides sebelum dilakukan hidro-ekstraksi. Gelembung renang kemudian diekstrak kolagen menggunakan metode hidro- ekstraksi (waktu ekstraksi dalam akuabides 1, 2 dan 3 jam) pada suhu waterbath 40 o C.
Optimasi Ekstraksi dan Karakterisasi Kolagen, Djailani et al.
Perbandingan akuabides dengan sampel yakni 2:1.  Filtrat hasil perendaman disaring dengan dua lapis kain tipis. Pelet diperoleh dengan sentrifugasi pada kecepatan 10000g selama 1 jam. Pelet dikering-bekukan menggunakan freeze dryer dan rendemen pada setiap perlakuan dihitung.

## Rendemen
Rendemen kolagen basis kering dihitung dengan rumus:

## Analisis kandungan Asam Amino
(AOAC 2012)

## Komposisi asam amino ditentukan dengan
High Performance Liquid Chromatography (HPLC). Perangkat HPLC dibilas dahulu dengan eluen yang akan digunakan selama 2-3 jam. Syringe yang akan digunakan juga harus dibilas dengan akuades. Analisis asam amino menggunakan HPLC terdiri atas 4 tahap yaitu pembuatan hidrolisat protein, pengeringan, derivatisasi dan injeksi serta analisis asam amino. Khusus untuk pengujian asam amino bebas tidak dilakukan proses hidrolisis dengan asam dan pemanasan. a. Tahap pembuatan hidrolisat protein Sampel ditimbang sebanyak 0,2 g dan dihancurkan. Sampel yang telah hancur ditambah dengan HCl 6 N sebanyak 5-10 mL, kemudian dipanaskan dalam oven pada suhu 100 o C selama 24 jam. Proses pemanasan dilakukan untuk menghilangkan gas atau udara yang ada pada sampel agar tidak mengganggu kromatogram yang dihasilkan dan untuk mempercepat reaksi hidrolisis. Hidrolisat protein yang diperoleh disaring dengan milipore berukuran 0,45 mikron.
b. Tahap pengeringan
Hidrolisat protein ditambah dengan 30 μL larutan pengering. Larutan pengering dibuat dari campuran antara metanol, natrium asetat, dan trietilamin dengan perbandingan 2:2:1. Proses pengeringan dibantu menggunakan
gas nitrogen untuk mempercepat pengeringan dan mencegah oksidasi.
c. Tahap derivatisasi
Larutan derivatisasi sebanyak 30 μL ditambahkan pada hasil pengeringan.
Larutan derivatisasi dibuat dari campuran antara larutan metanol, pikoiotisianat, dan trietilamin dengan perbandingan 3:3:4. Proses derivatisasi dilakukan agar detektor mudah untuk mendeteksi senyawa yang ada pada sampel, kemudian dilakukan pengenceran dengan cara menambahkan 10 mL asetonitil 60% atau buffer fosfat 0,1 M lalu dibiarkan selama 20 menit. Hasil pengenceran disaring kembali menggunakan millipore berukuran 0,45 mikron.
d. Injeksi ke HPLC
Hasil saringan diambil sebanyak 20 μL untuk diinjeksikan ke dalam HPLC. Penghitungan konsentrasi asam amino dilakukan dengan cara membandingkan kromatogram sampel dengan standar. Pembuatan kromatogram standar menggunakan asam amino yang mengalami perlakuan yang sama dengan sampel. Kandungan masing-masing asam amino pada bahan dapat dihitung dengan rumus:
Keterangan: X : konsentrasi asam amino C : konsentrasi standar asam amino FP : faktor pengenceran BM : bobot molekul dari masing-masing asam amino Analisis Berat Molekul (Singh et al.
2011)
Sampel dilarutkan dalam 5% SDS dan campuran diinkubasi pada suhu 85 o C selama 1 jam dalam waterbath. Campuran disentrifugasi pada 4000 g selama 5 menit pada suhu kamar. Supernatan yang diperoleh
Rendemen (%) = Berat kolagen 𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓 − 𝑑𝑑𝑓𝑓𝑑𝑑 Berat kering gelembung renang  x 100%
(g) contoh Berat 100 x BM x FP x C standar area Luas contoh area Luas X x 
dicampur dengan bufer (Tris HCl 60 mM, pH 6,8, mengandung 2% SDS dan 25% gliserol) dengan rasio 1:1 (v/v) dan mengandung 10% β-merkaptoetanol (β-ME). Campuran dipanaskan dalam air mendidih selama 2 menit. Sebanyak 5 μL sampel dimasukkan ke dalam gel polyacrylamide yang terdiri dari 7,5% running gel dan 3% stacking gel dan dielektroforesis pada arus konstan 15 mA/gel selama 3 jam. Setelah elektroforesis selesai, gel di staining dengan 0,05% (b/v) coomassie blue R-250 dalam 15% (v/v) metanol dan 5% (v/v) asam asetat selama 3 jam, kemudian sampel destaining dengan campuran 30%
(v/v) metanol dan 10% (v/v) asam asetat selama 2 jam. Berat molekul protein sampel diperkirakan berdasarkan berat molekul marker . Marker yang digunakan adalah Pre- stained Protein Markers (Broad Range) for SDS-PAGE dari Nacalai Tesque dengan berat molekul 8.8 sampai 192 KDa.
Analisis gugus fungsi dengan FTIR (Yan et al. 2008)
Analisis FTIR digunakan untuk mengetahui gugus-gugus fungsi khas dari kolagen yang dihasilkan. Sampel uji terlebih dahulu dibentuk pelet dengan campuran KBr. Sebanyak 100 mg KBr dan 2 mg sampel uji dicampurkan, kemudian ditumbuk sampai halus dan tercampur rata dalam mortaragate. Pengukuran sampel uji dilakukan pada bilangan gelombang antara 4000-5000/cm. Spektra FTIR yang dihasilkan menunjukkan puncak-puncak serapan bilangan gelombang dari sampel uji. Gugus-gugus fungsi sampel uji ditentukan berdasarkan puncak serapan bilangan gelombang yang terdeteksi dengan wilayah serapan untuk gugus fungsi protein.
Analisis Suhu Termal (Liu et al. 2012) Differential scanning calorimetry (DSC) digunakan untuk mempelajari transisi fase, Tabel 1 Variabel independen Variabel independen Simbol Min Maks Konsentrasi CH 3 COOH (M) X1 0,1 0,5 Waktu CH 3 COOH (b/v) (mL) X2 1 3 Waktu Ekstraksi (Jam) X3 1 3 Tabel 2 Analisis keragaman untuk model RSM dari rendemen kolagen hidro-ekstraksi Sumber keragaman Jumlah Kuadrat Derajat bebas Kuadrat Tengah F-hitung P-hitung Prob > F Model 3845,95 6 640,99 40,35 <0,0001 X1 3707,28 1 3707,28 233,38 <0,0001 X2 2,93 1 2,93 0,18 0,6766 X3 5,42 1 5,42 0,34 0,5722 X1 2 122,95 1 122,95 7,74 0,0194 X2 2 3,87 1 3,87 0,24 0,6321 X3 2 2,66 1 2,66 0,17 0,6908 Residual 158,85 10 15,89 Lack of fit 109,33 6 18,22 1,47 0,3691 Pure eror 49,53 4 12,38 Total 4004,80 16
Optimasi Ekstraksi dan Karakterisasi Kolagen, Djailani et al.
seperti melting, suhu transisi gelas (Tg), atau dekomposisi eksotermik, serta untuk menganalisa kestabilan terhadap oksidasi dan kapasitas panas suatu bahan. Sampel ditimbang 10 mg kemudian discan dari 0 sampai 200 o C pada kecepatan 5 o C/menit. Suhu transisi maksimum (Tmax) tercatat sebagai suhu puncak setiap puncak endotermik.

## Analisis Data
Data yang diperoleh pada tahap optimasi ekstraksi dianalisis dengan respone surface method (RSM) menggunakan design expert
7.0 versi trial . Tiga variabel independen (Tabel 1) yang digunakan dalam rancangan percobaan penelitian adalah konsentrasi asam asetat (X1), waktu perendaman CH 3 COOH (X2) dan waktu hidro-ekstraksi (X3), dengan tiga tingkat untuk setiap variabel, sedangkan variabel dependen adalah rendemen dari kolagen hidro-ekstraksi.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Optimasi Ekstraksi Kolagen
Konsentrasi asam asetat (X1) (Gambar 1 dan Gambar 2) berpengaruh signifikan terhadap rendemen kolagen ( p <0,05), sedangkan waktu perendaman asam asetat (X2) dan waktu hidro-ekstraksi (X3) (Gambar
3) tidak berpengaruh signifikan terhadap rendemen ( p >0,05). Hasil sidik ragam disajikan pada Tabel 2.
Rendemen kolagen   berkurang seiring meningkatnya konsentrasi asam asetat (Gambar 1 dan 2). Hasil Perhitungan rendemenen disajikan pada Tabel 3. Asam asetat merupakan salah satu pelarut organik populer yang digunakan untuk ekstraksi kolagen. Konsentrasi asam asetat dapat mengubah pH yang mengatur kerapatan muatan protein dan memodifikasi interaksi elektrostatik dan struktur protein (Vehrul et al. 1998). Proses ekstraksi dipengaruhi juga
Tabel 3 Rendemen kolagen hidro-ekstraksi X1 X2 X3 Rendemen (g) 0,1 1 2 59,339 0,1 3 2 63,051 0,1 2 1 61,804 0,1 2 3 64,008 0,3 2 2 52,175 0,3 2 2 44,896 0,3 3 3 43,010 0,3 2 2 44,896 0,3 2 2 44,838 0,3 1 1 44,896 0,3 2 2 43,242 0,3 1 3 44,925 0,3 3 1 50,551 0,5 1 2 24,246 0,5 2 1 20,534 0,5 2 3 19,258 0,5 3 2 11,949
oleh waktu karena perpindahan molekul suatu zat selama proses difusi tergantung pada waktu (Wang et al. 2008). Hasil pada Tabel 3 setelah dilakukan perhitungan menggunakan program design expert 7.0 didapatkan kondisi optimal untuk ekstraksi yakni kombinasi perlakuan konsentrasi asam asetat 0,1 M; waktu perendaman asam asetat 1 jam; dan waktu hidro-ekstraksi 1 jam.

## Karakterisasi Kolagen Asam Amino
Asam amino berkontribusi terhadap kestabilan struktur heliks kolagen (Ikoma et al. 2003). Komposisi asam amino kolagen hidro-ekstraksi dari gelembung renang ikan cunang disajikan pada Tabel 4. Hema et al.
(2013) menyatakan bahwa komposisi asam amino dari kolagen cenderung didominasi oleh glisin, prolin, hidroksiprolin dan alanin. Kolagen hidro-ekstraksi memiliki kandungan asam amino glisin, prolin dan alanin yakni 266,06; 108,96 dan 112,92 (/1000 total residu), menunjukkan bahwa glisin merupakan asam amino yang dominan. Hasil ini sesuai dengan penelitian Liu et al. (2015) yakni
ASC dari gelembung renang ikan grass carp yang memiliki kandungan glisin tertinggi yakni 334, 88 (/1000 total residu). Kaewdang et al. (2014) juga menyebutkan bahwa ASC dari gelembung renang ikan yellowfin tuna memiliki komposisi asam amino glisin tertinggi yakni 225, 80 (/1000 total residu). Hasil penelitian Sinthusamran et al. (2013)
Gambar 1 Pengaruh konsentrasi dan waktu perendaman asam asetat terhadap rendemen kolagen
Gambar 2 Pengaruh konsentrasi asam asetat dan waktu hidro-ekstraksi terhadap rendemen kolagen
Optimasi Ekstraksi dan Karakterisasi Kolagen, Djailani et al.
menunjukkan komposisi asam amino  glisin tertinggi dari ASC gelembung renang ikan seabass yakni 326, 111 (/1000 total residu).
Kittiphattanabawon et al. (2005) menyatakan bahwa glisin merupakan asam amino utama pada kolagen dan kadarnya paling tinggi jika dibandingkan dengan asam amino lainnya. Fungsi glisin pada kolagen yaitu membentuk tiga rantai alfa heliks menjadi struktur super heliks (Rengenstein dan Zhou 2007). Selain glisin, kandungan asam amino prolin pada kolagen berperan juga menjaga intergritas struktur kolagen (Tamilmozhi et al. 2013). Prolin merupakan asam amino yang unik selain hidroksi-prolin sehingga disebut imino acid. Imino acid Tabel 4 Komposisi asam amino kolagen hidro-ekstraksi Asam Amino Kadar Sisteina 0,00 Tirosina 8,17 Isoleusina 9,33 Histidina 18,16 Metionina 19,96 Leusina 21,57 Fenilalanina 22,68 Valina 24,25 Treonina 34,08 Lisina 37,91 Serina 40,78 Asam Aspartat 53,82 Asam Glutamat 95,51 Prolina 108,96 Alanina 112,92 Ariginina 125,84 Glisina 266,06 Total 1000
Gambar 3 Pengaruh waktu perendaman asam asetat dan waktu hidro-ekstraksi terhadap rendemen kolagen
memiliki cincin pirolidina yang berfungsi menahan struktur superheliks pada kolagen (Nagai et al. 2008).

## Berat Molekul SDS-PAGE
Pola elektroforesis kolagen hidro- ekstraksi dari gelembung renang ikan cunang disajikan pada Gambar 4. Kolagen hidro- ekstraksi memiliki pola elektroforesis yakni pita utama rantai α1 dan α2. Keberadaan rantai α menunjukkan bahwa kolagen tersebut merupakan kolagen tipe I (Ogawa et al. 2004). Hasil ini sesuai dengan penelitian kolagen gelembung renang sebelumnya yang menghasilkan rantai α1 dan α2 dari ikan grass carp (Liu et al. 2015), yellowfin tuna (Kaewdang et al. 2014), seabass (Sinthusamran et al. 2103), bighead carp (Liu et al. 2012). Pita protein di bawah rantai α terdeteksi
pada kisaran berat molekul 28 kDa sampai 85 kDa. Menurut Huang et al. (2016) kondisi tersebut menunjukkan bahwa ada peptida lain dari degradasi kolagen yang memiliki fungsi sebagai anti-oksidan, pengkelat mineral dan aktivitas ACE Inhibitor.

## Gugus Fungsi FTIR
Spektra FTIR kolagen Hidro-ekstraksi menunjukkan puncak serapan amida A, amida B, amida I, amida II dan amida III (Gambar 5) yang mengidentifikasikan struktur-struktur pada protein kolagen. Muyonga et al. (2004) menyatakan bahwa kisaran  puncak serapan amida A yakni  3400-3440/cm, amida B yakni 2925-2935/cm dan amida I yakni 1600-1700/ cm. Ahmad dan Benjakul (2010) dan Duan et al. (2009) menyebutkan puncak serapan amida II berkisar antara 1550-1600/cm. Ahmad dan
192 kDa 112 kDa 85 kDa 60 kDa 47 kDa 35 kDa

## 28 kDa
Gambar 4 Pola elektroforesis kolagen hidro-ekstraksi dari gelembung renang ikan cunang: M ( marker ) dan C (kolagen hidro-ekstraksi)
Gambar 5 Spektra FTIR kolagen hidro-ekstraksi
JPHPI 2016, Volume 19 Nomor 2
Optimasi Ekstraksi dan Karakterisasi Kolagen, Djailani et al.
Benjakul (2010), Benjakul et al. (2010) dan Heu et al. (2010) menemukan puncak serapan amida III berkisar antara 1220-1320/cm. Kolagen hidro-ekstraksi memiliki puncak serapan Amida A yakni 3430,26/cm, Amida
B yakni 2927,04/cm; Amida I yakni 1634,43/ cm; amida II yakni 1546,24 cm-1; amida III yakni 1238,50/cm. Muyonga et al. (2004) menyatakan bahwa amida A menunjukkan adanya gugus NH dan menunjukkan adanya ikatan hidrogen, amida B menunjukkan adanya gugus CH, amida I menunjukkan adanya gugus C=O yang merupakan struktur sekunder protein, amida II menunjukkan adanya ikatan NH dan amida III menunjukkan adanya ikatan N-H yang memperlihatkan adanya struktur heliks.
Suhu Termal (DSC) Kolagen hidro-ekstraksi memiliki suhu transisi gelasi (Tg) 67,26 o C. Tg berkorelasi dengan kandungan asam amino yang terkandung di dalamnya yakni proline dan hidroksiproline (Kittiphattanabawon et al.
2005). Kandungan asam amino yang tinggi akan meningkatkan stabilitas termal dari kolagen (Ahmad dan Benjakul 2010).
Kolagen hidro-ekstraksi dari gelembung renang ikan cunang memiliki Tg lebih tinggi dibanding kolagen gelembung renang metode ASC: grass carp 38,3 o C (Liu et al. 2015), yellowfin tuna 32,97 o C (Kaewdang et al. 2014), seabass 35,02 o C (Sinthusamran et al. 2013), bighead carp 37,3 o C (Liu et al. 2012). Kolagen yang berasal dari ikan yang hidup perairan panas atau hangat akan memiliki kestabilan termal lebih tinggi dibanding ikan yang hidup diperairan dingin dan beku (Rengenstein & Zhou 2007).

## KESIMPULAN
Kondisi optimum ekstraksi kolagen adalah kombinasi perlakuan konsentrasi 0,1 M, waktu perendaman asam asetat 1 jam dan waktu hidro-ekstraksi 1 jam menghasilkan rendemen sebanyak 63,35 %. Kolagen hidro- ekstraksi mempunyai karakteristik kolagen
tipe I dan memiliki suhu termal yang baik, sehingga dapat diaplikasikan pada industri kosmetik dan nutrasetika.

## DAFTAR PUSTAKA
Ahmad M, Benjakul S. 2010. Extraction and characterization of pepsin soluble collagen from the skin of unicorn leatherjacket ( Aluterus monocerous ). Food Chemistry Journal 120:817-824. Alhana, Suptijah P, Tarman K. 2015. Ekstraksi dan karakterisasi kolagen dari daging teripang gamma ( Stichopus variegatus ). Jurnal Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia 18(2): 150-161.
Astiana I, Nurjanah, Nurhayati T. 2016.
Karakterisasi kolagen larut asam dari kulit ikan ekor kuning. Jurnal Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia 19(1): 79-93. [AOAC] Association of Official Analytical Chemist. 2012. Offucial Methods of Analysis of The Association of OfficialAalytical Chemist. Washington, DC: Inc. [AOAC] Association of Official Analytical Chemist. 2005. Official Methods of Analysis (18 Edn). Maryland: Association of Official Analytical Chemist Inc.
Duan R, Zhang JJ, Du XQ, Yao XC, Konno K. 2009. Properties of collagen from skin, scale and bone of carp ( Cyprinus carpio ).
Food Chemistry 112:702–706.
Hema GS, Shyni K, Mthew S, Ananda R, Ninan G, Lakshmanan PT. 2013. A simple method for isolation of fish skin collagen- biochemical characterization of skin collagen extracted from albacore tuna ( Thunnus alalunga ), dog shark ( Scoliodon sorrakowah ), and Rohu ( Labeo rohita ).
Annals of Biological Research 4(1): 271-
278.
Heu MS, Lee JH, Kim HJ, Jee SJ, Lee JS, Jeon YJ. 2010. Characterization of acid- and pepsin-soluble collagens from ﬂatﬁsh skin. Food Science and Biotechnology 10:27–33.
Huang CY, Kuo JM, Wu SJ, Tsai HT. 2016.
Isolation and characterization of fish scale collagen from tilapia ( Oreochromis sp.) by a novel extrusion–hydro extraction process. Food Chemistry 190:997-1006. Ikoma T, Kobayashi H, Tanaka J, Walsh
D, Mann S. 2003. Physical properties of type I collagen extracted from fish scales of Pagrus major and Oreochromis
niloticas . International Journal Biolgy Macromolecullar 32(3-5):199-204. Kaewdang O, Benjakul S, Kaewmanee T, Kishimura H. 2014. Characteristic of collagens from the swim bladders of yellowfin tuna ( Thunnus albacares ). Food
Chemistry 155: 264-270. Kasankala, L.M., Xue, Y., Weilong, Y., Hong, S.D., and He, Q. 2007. Optimization of gelatine extraction from grass carp ( Catenopharyngodon idella ) fish skin by response surface methodology. Bioresource Technology 98(17): 3338– 3343. Kittiphattanabawon P, Soottawat Benjakul S, Visessanguan W, Nagai T, Tanaka M. 2005. Characterisation of acid-soluble collagen from skin and bone of bigeye snapper ( Priacanthus tayenus ). Food
Chemistr y 89:363-372. [KKP] Kementrian Kelautan dan Perikanan. 2015. KKP soroti tiga UPI di sorong. http://kkp.go.id/index.php/berita/kkp- soroti-tiga-upi-di-sorong/. [10 Mei 2015].
Leach AA. 1966. Collagen chemistry in relation to isinglass and isinglass finings a review. Journal of the Institute of Brewing
73:8-16.
Liu D, Liang L, Regenstein MJ, Zhou P. 2012.
Extraction and characterization of pepsin solubilised collagen from fins, scales, skin, bones and swim bladders of bighead carp ( Hypophthalmichthys nobilis ). Food Chemistry 133: 1441-1448.
Liu D, Zhang X, Li T, Yang H, Zhang
H, Regenstein MJ, Zhou P. 2015. Extraction and characterization of acid and pepsin soluble collagen from the scales, skin, and swim bladders of gras
carp ( Ctenopharyngodon idella ). Food Bioscience 9: 68-74. Nagai T, Suzuki N, Nagashima T. 2008. Collagen from common minke whale
( Balaenoptera acutorostrata ) unesu. Food
Chemistry 111: 296-301.
Muyonga JH, Cole CGB, Duodu KG. 2004.
Characterisation of acid soluble collagen from skins of young and adult Nile perch ( Lates niloticus ). Food Chemistry 85:81–
89.
Ogawa M, Portier RJ, Moody MW, Bell
J, Schexnayder MA, Losso JN. 2004. Biochemical properties of bone and scale collagens isolated from the subtropical fish black drum ( Pogonis cromis ) and sheepshead seabream ( Archosargus probatocephalus ). Food Chemistry 88: 495-501. Potaros T, Raksakulthai N, Runglerdkreangkrai J, Worawattanamateekul W. 2009. Characteristics of collagen from nile tilapia ( Oreochromis niloticus ) skin isolated by two different methods. Natural
Science 43(3):584-593.
Regenstein JM, Chaudry MM, Regenstein CE.
2003. The kosher and halal food laws. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety 2:111–117. Rengenstein JM & Zhou P. 2007. Collagen and gelatin from marine by-product, maximising the value of marine by- product. Florida: CRC Press. Santos MH, Silva RM, Dumont VC, Neves JS, Mansur HS, and Heneine LGD.
2013. Extraction and characterization of highly purified collagen from bovine pericardium for potential bioengineering applications. Journal of Materials Science and Enginering C 33: 790–800.
Singh P, Benjakul S, Maqsood S, Kishimura H. 2011. Isolation and characterization of collagen extracted from the skin of striped catfish ( Pangasianodon hyphothalmus ). Food Chemistry 124:97-105. Sintusamran S, Benjakul S, Kishimura H.
2013. Comaprative study on molecular
JPHPI 2016, Volume 19 Nomor 2
Optimasi Ekstraksi dan Karakterisasi Kolagen, Djailani et al.
characteristics of acid soluble collagens from skin and swim bladder of seabass ( Lates calcarifer ). Food Chemistry 138:2435-2441.
Tamilmozhi S, Veeruraj A, Arumugam M.
2013. Isolation and characterization of acid and pepsin-solubilized collagen from the skin of sailfish ( Istiophorus platypterus ). Food Research International
54: 1499-1505.
Trilaksani W, Nurjanah, Utama WH. 2006.
Pemanfaatan gelembung renang ikan patin ( Pangasius hypothalmus ) sebagai bahan baku isinglass. Jurnal Teknologi
Hasil Perikanan 9(1):12-25. Vehrul M, Roefs M and Kruif G. 1998. Kinetics of heat-induced aggregation of ß-lactoglobulin. Journal of Agricultural and Food Chemistry 46:896-903. Wang L, Liang Q, Chen T, Wang Z, Xu J, Ma H. 2014. Characterization of collagen from the skin of Amur sturgeon (Acipenser schrenckii). Food Hydrocolloids 38:104-
109.
Whitford D. 2005. Protein structure and function. John Willey & Sons Ltd. Inggris.
p. 528. Wulandari, Suptijah P, Tarman K. 2015. Efektivitas pretreatment alkali dan hidrolisis asam asetat terhadap karakteristik kolagen dari kulit ikan gabus. Jurnal Pengolahan Hasil Perikanan Indonesia 18(3): 287-302.
Yan M, Li B, Zhao X, RenG, Zhuang Y,
Hou H, Zhang X, Chen L, Fan Y. 2008.
Characterization of acid soluble collagen from the skin of walleye pollock ( Theragra chalcogramma ). Food Chemistry 107:1581-1586. Zhang Y, Liu WT, Li GY, Shi B, Miao YQ, & Wu XH. 2007. Isolation and characterization of pepsin soluble collagen from the skin of grass carp ( Ctenopharyngodon idella ).
Food Chemistry 103: 906–912.