Available  online at:
Volume 5, Nomor 1, 2021
http://jurnal.utu.ac.id/ jakultura P-ISSN: 2579-4752, E-ISSN: 2620-7397
1 Progam Studi Akuakultur, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Teuku Umar. Jalan Kampus Alue Peunyareng, Kec. Meureubo, Aceh Barat. Indonesia. Telpon 08116800980, email: yusranibrahim@utu.ac.id
OPTIMASI WAKTU PEMBELAHAN SEL DAN SUHU KEJUTAN TERHADAP TINGKAT KEBERHASILAN TRIPLOID IKAN SERUKAN ( Osteochilus sp.)

## THE SUITABILITY OF CELL DIVISION TIME AND HEAT SHOCK TREATMENT
FOR TRIPLOIDIZATION OF Osteochilus sp.
Ulfa Zaleha 1) , Yusran Ibrahim 1)* , Fazril Saputra 1))
¹Program Studi Akuakultur Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Teuku Umar
* Korespondensi: yusranibrahim@utu.ac.id

## ABSTRACT
This  study  aims  to  determine  the  optimization  of  cell  division  and  temperature  shock  on  the  triploid success  rate  of  the  seurukan  fish  ( Osteochilus sp.)  By  allowing  different  temperature  shock  on  the degree of fertilization, the degree of hatching, the success rate of the triploid, the daily growth rate and the survival rate of the serukan fish’s ( Osteochilus sp.). In this research, the age of the zygote used was 20  minutes  old  after  fertilization,  the  shock  duration  was  2  minutes  and  the  temperature  shock  were 40,  41,  and 42°C.  larvae  were  looked  after  for  14 days  and  fed  with  egg  yolk  and Artemia sp.  using Adlibitum with a frequency of 2 times a day. The container used in this study was a 12-unit jar with a volume  of  2.5  liters  of  water  equipped  with  aeration  with  15  larvae  for  each  replication.  The  results showed  that  larvae  that  treated  in  different  heat  shocks  had  a  significant  effect  (P  <0.05)  on  the fertilization  degree  49.3  ±  6.9%  with  a  temperature  shock  of  41°C,  as  for  hatching  degrees  49.2  ± 11.1%  with  a  temperature  shock  of  41°C,  and  survival  rate  is  84.4  ±  7.6%  at  temperature  shock  of 41°C, while daily growth rate had no significant effect (P> 0.05) 5.15 ± 1.0% at temperature shock of 41°C, further 60% of triploid success rate with a temperature shock of 42°C.
Keywords: Cell Division, Temperature Shock, Triploid, Osteochilus sp.

## ABSTRAK
Penelitian ini dilakukan untuk mengetahui optimasi pembelahan sel dan suhu kejutan terhadap tingkat keberhasilan  triploid  ikan  serukan  ( Osteochilus sp.)  dengan  pemberian  suhu  kejut  yang  berbeda terhadap derajat pembuahan, derajat penetasan, tingkat keberhasilan triploid, laju pertumbuhan harian dan  tingkat  kelangsungan  hidup  larva  ikan  serukan  ( Osteochilus sp.).  Pada  penelitian  ini  umur  zigot yang  digunakan  20  menit  setelah  fertilisasi,  lama  kejutan  2  menit  dan  suhu  kejutan  40,41,  dan  42 ̊C. larva  dipelihara  selama  14  dengan  pemberian  kuning  telur  dan Artemia sp.  secara Adlibitum dengan frekuensi pemberian 2 kali  sehari.  Wadah penelitian  yang digunakan  toples dengan  volume 2,5 Liter air  sebanyak  12  Unit  yang  dilengkapi  dengan  aerasi.  Jumlah  larva  sebanyak  15  ekor  /ulangan.  Hasil penelitian  menunjukan  bahwa  larva  ikan  yang  diberi  kejutan  panas  yang  berbeda  memberikan pengaruh  nyata  (P<0,05)  terhadap  derajat  pembuahan  49,3±6,9%  dengan  suhu  kejut  41°C,  derajat penetasan 49,2±11,1% dengan  suhu  kejut 41°C, tingkat  kelangsungan hidup 84,4±7,6% dengan  suhu kejut  41°C,  laju  pertumbuhan  harian  tidak  berpengaruh  nyata  (P>0,05)  5,15±1,0%  dengan  suhu kejutan 41°C dan tingkat keberhasilan triploid 60% dengan suhu kejut 42°C.
Kata kunci: Pembelahan sel, kejut suhu panas, triploid, Osteochilus sp.

## PENDAHULUAN
Ikan serukan Osteochilus sp. merupakan ikan lokal yang memiliki potensi untuk dikembangkan sebagai  salah  satu  komoditas  budidaya.  Ikan  serukan  memiliki  keunggulan  antara  lain  mudah dibudidayakan  karena  tahan  terhadap  serangan  penyakit  (Subagia et  al. 2006).  Rasanya  gurih  dan tekstur dagingnya yang lembut membuat ikan ini banyak diminati oleh masyarakat terutama di Aceh, hasil observasi dilapangan ikan ini dijual dengan  harga yang relatif tinggi  yaitu Rp. 40.000  – 50.000 /kg. Ditinjau dari sisi reproduksinya, ikan ini memiliki tingkat fekunditas tinggi mencapai 550 butir/gr induk,  pembuahan  dan  penetasan  masing-masing  mencapai  95  dan  93%  (Ibrahim et  al. 2018).  Ikan serukan  di  habitatnya  mengkonsumsi  alga,  lumut  dan  tumbuhan  yang  menempel  pada  benda-benda yang mangapung sehingga tergolong sebagai ikan herbivora (Samsudin 2010).
Penelitian  tentang  ikan  serukan  telah  banyak  dilakukan  diantaranya  tentang  penyimpangan genetik  (Mulyasari et  al.  2010 ),  aspek  reproduksinya  di  perairan  Rawa  Pening  kecamatan  Tuntang Kebupaten Semarang (Rochmatin et al . 2014), pemijahan (Muchlisin et al . 2014: Adami et al . 2015), kebutuhan  protein  yang  optimum  (Samsudin  2010),  kebutuhan  ransum  harian  (Asma et  al .  2016), permanfaatan  ekstrak  bawang  merah, Alium  cepa dalam  pakan  sebagai  sumber  prebiotik  (Mayana et al. 2016) dan perkembangan post-larva dalam pemberian pakan berbeda (Yusuf et al. 2014).
Prinsip-prinsip  modifikasi  genetik  metode  yang  digunakan  untuk  meningkatkan  produksi  dan kualitas  benih  yaitu  dengan  cara  rekayasa  genetik  (Nurasni  2012).  Upaya  perbaikan  performa pertumbuhan  ikan  dapat  dilakukan  dengan  rekayasa  genetik  melalui  beberapa  metode,  diantaranya seleksi, hibridisasi atau persilangan, rekayasa set kromosom dan transgenesis.
Triploidisasi merupakan salah satu bagian dari metode rekayasa kromosom. Triploidisasi adalah rekayasa  jumlah  ploidi  pada  set  kromosom  yaitu  dari  dua  set  (diploid)  menjadi  tiga  set  (triploid). Triploidisasi  menghasilkan  benih  dengan  karakter  steril  (gonad  tidak  berkembang),  sehingga  dapat mengontrol populasi di alam, meningkatkan sintasan dan pertumbuhan (Berrill et al. 2012). Produksi ikan triploid sangat penting dilakukan dalam kegiatan budidaya, karena dapat mengalihkan energi dari pematangan  gonad  ke  pertumbuhan  somatik  dan  dapat  memperbaiki  kualitas  daging  (Lawson  dan Ishola 2010). Metode Triploid yang diinduksi adalah satu-satunya metode yang efektif saat ini tersedia untuk produksi massal ikan serukan.
Studi  triploidisasi  mengunakan  suhu  teknik  kejut  telah  dilakukan  pada  beberapa  ikan  spesies seperti ikan Selais (Alawi et al. 2009), nila tilapia (Mukti et al. 2009), ikan mas (Mukti et al. 2001), lele  afrika  (Nurasni  2012)  dan  ikan  patin  (Ibrahim et  al .  2017).  Studi  sebelumnya  menunjukkan pertumbuhan kinerja ikan triploid lebih cepat daripada ikan diploid karena teknik triploidisasi sangat menjanjikan untuk meningkatkan kinerja pertumbuhan ikan serukan.

## METODE PENELITIAN

## Rancangan Penelitian
Penelitian  ini  menggunakan  rancangan  acak  lengkap  (RAL)  dengan  4  perlakuan  dan  3  kali ulangan.  Setiap  ulangan  dipelihara  sebanyak  15  ekor  larva  ikan  uji  sehingga  total  ikan  uji  yaitu  180 ekor.
P0 : Pemijahan normal (kontrol)
P1 : Umur zigot 20 menit pada suhu 40 °C lama kejut 2 menit P2 : Umur zigot 20 menit pada suhu 41 °C lama kejut 2 menit P3 : Umur zigot 20 menit pada suhu 42 °C lama kejut 2 menit
Ulfa Zaleha et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (1), 57-64 (2021)

## Pemijahan Ikan Uji
Pemijahan dilakukan secara buatan, induk betina  ikan serukan diinjeksi  Ovaprim dengan  dosis 0,5  ml/kg  sedangkan  induk  jantan  dengan  dosis  0,3  ml/kg.  Penyuntikan  dilakukan  pada  jam  23.00 WIB, setelah 10 jam ikan siap di- stripping dan dilakukan pembuahan.

## Produksi Triploid (kejut suhu)
Sebelum  melakukan  induksi  triploid  menggunakan  kejut  suhu  panas  ( heatshock  treatment ), terlebih  dahulu  dilakukan  pengamatan  waktu  pembelahan  sel  telur.  Hal  ini  dilakukan  agar mendapatkan  waktu yang  tepat  untuk diberikan kejut suhu yaitu saat pembelahan meosis  II atau  saat pelepasan polar body II. Pada pengamatan pembelahan sel telur didapatkan umur zigot 20 menit saat pelepasan polar  body II.  Kemudian  diberikan  kejut  suhu  40°C,  41°C dan  42°C  selama  2  menit  pada umur  zigot  20  menit.  Telur  dan  sperma  dibuahi,  selanjunya  induksi  triploid  dilakukan  secara  massal dengan kejut suhu 40°C, 41°C dan 42°C selama dua menit pada umur zigot 20 menit yang dilakukan di dalam Styrofoam ukuran 40 x 20 x 20 cm³.  Telur di inkubasi bak penetasan dengan suhu 26-29°C dan menetas setelah 30-36 jam.

## Identifikasi Triploid
Ikan uji dipelihara  selama 14 hari dalam toples berukuran diameter 27,5 cm, tinggi 24 cm dan keliling  88  cm.  Larva  ikan  diberikan  pakan  alami  kuning  telur  dan  artemia  hingga  berumur  14  hari. Pemberian  pakan  alami  diberikan  dengan  frekuensi  2  kali  sehari  sekali  secara adlibitum .  Analisis ploidi  dilakukan  dengan  preparasi  nukleolus  menggunakan  modifikasi  metode  Howell  dan  Black (1980),  yaitu  dengan  metode  pewarnaan  perak  ( silver  staining ).    Pewarna  yang  digunakan  dalam metode  ini  adalah  perak  nitrat  yang  berfungsi  untuk  mewarnai  komponen-komponen  protein  pada nukleolus. Pewarnaan perak nitrat ini, dilakukan  saat interfase, sel inti akan terlihat berwarna  kuning sedangkan  nukleolus  berwarna  hitam.  pada  saat  metafase,  kromosom  berwarna  kuning  dan  NOR berwarna  hitam.  Jumlah  nukleolus  ini  bervariasi  atau  tetap  tergantung  pada  spesies  dan  jumlah kromosom yang memiliki NOR.

## Parameter yang Diamati
1. Derajat Pembuahan (DPH)
Derajat pembuahan dihitung setelah 6-8 jam fertilisasi, parameter ini untuk melihat kualitas telur merata atau tidak. Rumus yang digunakan sebagai berikut:
DPh (%)   = Jumlah telur yang dibuahi
Jumlah telur yang digunakan x  100
Telur  yang  dibuahi  dilihat  dari  warnanya  yang  hijau  kecoklatan,  sedangkan  telur  yang  tidak dibuahi berwarna putih keruh.

## 2. Derajat Penetasan (DPH)
Derajat penetasan dihitung 3 jam setelah telur menetas, parameter ini untuk melihat perbedaan tingkat  penetasan  antar  perlakuan  pasca  kejutan  suhu  panas.  Dihitung  dengan  menggunakan  rumus sebagai berikut:
Jumlah telur yang dibuahi x  100
Ulfa Zaleha et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (1), 57-64 (2021)
3. Laju Pertumbuhan
Laju pertumbuhan harian dihitung dengan menggunakan rumus berikut:
α  =  100 × [ln(Wt)−ln(W0)]/t
Keterangan: α :  Laju Pertumbuhan Harian (% hari -1 ) Wt :  Bobot Akhir (gr) Wo  :  Bobot Awal (gr) t :  Lama Pemeliharaan (hari)
4. Persentase Triploid
Keberhasilan triploid dapat dihitung dengan menggunakan rumus berikut:
3n (%)   = Jumlah ikan teridentifikasi 3n Jumlah ikan sampel x  100

## Analisis Data
Data  kuantitatif  yang  diperoleh  akan  ditabulasi  menggunakan  Microsoft  Excel  2016  dan  RAL (Rancangan Acak Lengkap) menggunakan SPSS versi 23 windows dan data kualitatif pembelahan sel, distribusi nukleolus dianalisis secara deskriptif.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Derajat  pembuahan  (DPh),  derajat  penetasan  (DPt),  tingkat  keberhasilan  triploid  (TKT),  laju pertumbuhan  harian  (LPH)  dan  tingkat  kelangsungan  hidup  (TKH)  ikan  serukan  ( Osteochilus sp.) dapat dilihat pada tabel 1.
Tabel 1. Hasil yang diperoleh dari parameter pengamatan
Parameter Perlakuan Kontrol P1 P2 P3 DPh (%) 65 ± 3,5 d 33,7 ± 3,5 b 49,3 ± 6,9 c 22,3 ± 6,8 a DPt (%) 86,9 ± 6,5 b 40 ± 1,8 a 49,2 ± 11,1 a 38,3 ± 17,7 a TKT (%) 0% 50% 50% 60% LPH (%/Hari) 3,28 ± 1,7 a 3,18 ± 2,6 a 5,15 ± 1,0 a 3,30 ± 1,2 a TKH (%) 68,9 ± 10,1 ab 66,7 ±13,3 ab 84,4 ± 7,6 b 57,7 ± 3,8 a
Keterangan:   Huruf superscript dibelakang standart deviasi yang berbeda menunjukkan perbedaan yang nyata (p˂0,05)

## Derajat Pembuahan (DPH
Fertilisasi atau pembuahan adalah pengabungan antara inti sel telur dan inti sel sperma sehingga membentuk zigot yang kemudian mengalami pembelahan 1 menjadi 2 sel. Hal ini dapat terjadi apabila sperma  berhasil  menembus  mikrofil  telur  dan  bersatu  dengan  inti  telur  (Lagler  1970).  Tingkat keberhasilan  derajat  pembuahan  pada  ikan  sangat  ditentukan  oleh  faktor  kualitas  telur,  spermatozoa, media  dan  penangganan  manusia.  Pengamatan  pengkembangan  telur  langsung  yang  diamati  dapat
Ulfa Zaleha et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (1), 57-64 (2021)
dilihat pada gambar dibawah, adapun waktu yang diamati dibawah mikroskop terjadinya pembelahan meiosis II pada telur ikan serukan yaitu umur zigot 15 menit sampai 25 menit.
Berdasarkan  hasil  yang  diperoleh  menunjukkan  bahwa  kualitas  induk  ikan  serukan  yang digunakan berkualitas baik (Dunham 2006). Menurut Nuraini (2006) Menyatakan bahwa adanya rata- rata persentase telur yang berhasil dibuahi adalah tidak lepas dari kualitas telur dan spermatozoa yang berhasil  dibuahi  oleh  masing-masing  induk  jantan  dan  betina.  Dalam  penelitian  Dunham  (2006) berpendapat  bahwa  presentase  pembuahan  pada  ikan  yang  diberikan  kejutan  pada  akan  lebih  rendah dari  ikan  tanpa  perlakuan  (kontrol)  kejutan  panas,  salah  satu  faktornya  karena  kurang  tepatnya penanganan  dan  perlakuan  pada  telur  saat  kejut  panas.  Hal  ini  dapat  merusak  kualitas  telur  ikan serukan  ( Osteochilus sp.).    Pada  penelitian  Zulhardi et  al. (2016)  pemberian  kejutan  panas  sangat mempengaruhi  presentase  triploid,  semakin  tinggi  presentase  triploid  jika  dilakukan  pada  umur  zigot sebelum terjadinya pelepasan polar body II dan mencapai presentase triploid 83%.

## Derajat Penetasan (DPT)
Perhitungan derajat penetasan (DPT) adalah perhitungan derajat penetasan keseluruhan dimana semua larva yang menetas dihitung dibagi dengan telur terbuahi. Pada proses inkubasi terjadi proses- proses  embryogenesis  di  dalam  telur  yaitu  pembentukan  organ-organ  tubuh  sehingga  embrio berukuran  kecil  menjadi  lebih  panjang  atau  besar  dari  pada  lingkaran  kuning  telurnya.  Perbedaan waktu inkubasi pada telur faktor internal dan faktor eksternal (Effendie 1997).
Berdasarkan  hasil  perhitungan  ANOVA  menunjukan  bahwa  pemberian  kejutan  panas  yang berbeda  pada  ikan  serukan  berberda  nyata  (P˂0,05)  terhadap  derajat  penetasan  ikan  serukan ( Osteochilus sp).  Derajat  penetasan  telur  yang  dikejutkan  dengan  suhu  dingin  dapat  digolongkan masih  lebih  baik  dari  pada  perlakuan  yang  dikejutkan  dengan  suhu  panas  (Carman  1992).  Namun penelitian Hartono dan Witoko (2012) menyatakan derajat penetasan telur dengan kejutan panas akan menghasilkan  individu  triploid  lebih  cepat  pada  ikan  patin  berkisar  antara  40-84%  presentase  ikan triploid (3n).

## Persentase Ikan Triploid
Triploidi  salah  satu  program  pemulian  ikan  melalui  manipulasi  kromosom.  Tujuannya  adalah untuk  menghasilkan  sepenuhnya  ikan  steril  yaitu  ikan  yang  memiliki  tiga  set  kromosom  (Thorgaard and Allen 1987). Sterilisasi pada ikan dapat mengatasi pengaruh dari pematangan gonad dan dialihkan untuk pertumbuhan ikan.
Hasil penelitian menunjukkan adanya pengaruh pemberian kejutan panas terhadap keberhasilan triploid ikan serukan, hal ini di duga pada P1 dan P2 rendahnya suhu kejutan yang diberikan pada saat induksi triploid, pemberian kejutan panas berbeda mampu mempengaruhi kelangsungan hidup embrio ikan, namun mampu menghasilkan keturunan-keturunan ikan yang triploid (Sukarti et al. 2006). Hal ini menunjukkan  kejutan suhu panas mampu  mencegah terjadinya pelepasan polar body II tanpa mengakibatkan kematian total pada zigot dan pemberian kejutan salah satu faktor utama dalam mengubah  jumlah  kromosom  dari  diploid  (2n)  menjadi  triploid  (3n)  penambahan  satu  set  kromosom diduga sebagai akibat dari penahanan kutup II (polar body II) pada saat diberi kejutan suhu (Hartono dan  Witoko  2012).  Gheyas et  al. (2001) menyatakan  semakin  tinggi  suhu  dan  semakin  lama  kejutan panas  yang  diberikan  dapat  mengakibatkan  kecacatan  pada  larva  yaitu  membawa  efek  pada  angka penetasan  kelangsungan  hidup.  Pada  penelitian  Alawi et  al. (2009)  pemberian  kejutan  panas  dengan suhu  kejutan  40 ̊C  dan  lama  kejutan  1-5  menit  dapat  menginduksi  triploid  ikan  selais  ( Cryptopterus lympok) dengan  tingkat  keberhasilan  triploid  mencapai  41,7-91,7%.  Menurut  Ibrahim et  al. (2017) berpendapat  bahwa  pemberian  kejutan  panas  pada  suhu  42 ̊C  dan  lama  kejutan  2  menit  mampu mendapatkan ikan patin siam ( Pangasianodon hypopthlalmus) dengan gejala sterilitas pada ikan patin
Ulfa Zaleha et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (1), 57-64 (2021)
siam. Susilo et al. (2018) menambahkan rekayasa set kromosom dengan  kejut panas pada  suhu 40 ̊C dan lama kejutan 1,5-2 menit mampu menghasilkan keberhasilan ikan triploid mencapai 43-53%.
Haloho  (2015)  menambahkan  induksi  triploid  pada  ikan  ingir-ingir  ( Mytus  nigriceps) dengan kejutan  panas  dapat  menghasilkan  ikan  ingir-ingir  yang  memiliki  kromosom  3n  (triploid). Sastrawibawa  (2003)  berpendapat  keberhasilan  ginogenesis  triploid  selain  dipengaruhi  oleh  kejutan panas juga dipengaruhi oleh tingginya rendahnya suhu yang berikan dan lama waktu yang dikejutkan. Zulhardi et al. (2016) menyatakan pertumbuhan ikan triploid lebih cepat berbanding ikan normal, pada ikan triploid diperoleh bobot dengan rata-rata 170,66-181,33 g sedangkan ikan normal 120,66 g.
Pada awal setelah fertilisasi diketahui umur zigot yang digunakan yaitu 20 menit dan suhu yang digunakan 40, 41 dan 42̊ C yang sudah ditentukan. pada kejut panas terdapatnya penambahan satu set kromosom  yang  diduga  sebagai  akibat  dari  penahanan  kutub  II  ( polar  body II).  Thorgaard  (1983) menyatakan  bahwa  terbentuknya  ikan-ikan  triploid  diakibatkan  oleh  adanya  penambahan  satu  set kromosom  pada  saat  sel  diploid.  Sedangkan  sumber  set  kromosom  dalam  ikan  triploid  adalah  badan kutub  II  yang  terdapat  dalam  sel  telur.  Menurut  Piferrer et  al. (2000)  pemberian  kejutan  panas berpengaruh terhadap rendahnya  angka pembuahan, penetasan dan  kelulushidupan  ikan triploid yang disebabkan oleh beberapa faktor. Pada ikan turbot dan ikan sea bass, rendahnya angka-angka tersebut dikarenakan penanganan dan perlakuan terhadap pada saat induksi triploid.
Gambar 1.  Hasil pengamatan sel setelah pewarnaan menunjukkan adanya 3 titik hitam yang menandakan ikan triploid (3n)

## Laju Pertumbuhan Harian (LPH)
Laju  pertumbuhan  adalah  perubahan  bentuk  akibat  pertambahan  panjang,  bobot  dan  volume dalam  periode  tertentu  (Effendi  1997).  Laju  pertumbuhan  harian  berhubungan  erat  dengan  efiensi pemakaian makanan yang dimakan oleh larva ikan. Berdasarkan hasil pengamatan larva ikan serukan setiap perlakuan yang berbeda selama 14 hari masa pemeliharaan, diketahui bahwa asupan larva ikan triploid  lebih  tinggi  dibandingkan  asupan  ikan  diploid  sehingga  menghasilkan  larva  ikan  serukan dengan pertambahan bobot yang berbeda. Namun laju pertumbuhan harian pada setiap perlakuan tidak berbeda  setiap  harinya  tetapi  range  nilai  laju  pertumbuhan  harian  tertinggi  pada  P2.  Hal  ini  diduga masa pemeliharaan larva ikan serukan yang relatif singkat sehingga tidak ada pertambahan bobot yang segnifikan.
Berdasarkan  hasil  perhitungan  ANOVA  menunjukan  bahwa  pemberian  kejutan  panas  yang berbeda  tidak  berberda  nyata  (P>0.05)  terhadap  laju  pertumbuhan  harian  bobot  larva  ikan  serukan ( Osteochilus sp). Berdasarkan hasil pengamatan terlihat bahwa pertambahan bobot larva beragam pada keempat perlakuan. Pertambahan bobot tertinggi diperoleh P2 (umur zigot 20 menit, suhu kejut 41̊ C dan lama kejut 2 menit) dengan nilai rata-rata 5,15% dan pertambahan bobot terendah pada P1 (umur zigot 20 menit, suhu kejut 40̊ C dan lama kejut 2 menit) dengan nilai rata-rata 3,18%. sedangkan pada P3 (umur zigot 20 menit, suhu kejut 42̊ C dan lama kejut 2 menit) dengan nilai rata-rata 3,30% dan PO kontrol  dengan  nilai  rata-rata  3,28%.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  perlakuan  kejut  panas terhadap  laju  pertumbuhan  harian  ikan  triploid  lebih  cepat  berbanding  ikan  normal  (Zulhardi et  al. 2016), dilihat dari pertambahan bobot rata-rata larva ikan serukan 0,005-0,020 gr. Hal ini diduga ikan
Ulfa Zaleha et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (1), 57-64 (2021)
triploid  mampu  mengalihkan  pertumbuhan  gonad  ke  pertumbuhan  somatik.  Semakin  tinggi  jumlah ikan  triploid  yang  didapatkan  pada  populasi  ikan  serukan  maka  semakin  meningkat  rata-rata  laju petumbuhan pada ikan secara keseluruhan (Zulhardi et al. 2016).

## KESIMPULAN
Dari  hasil  penelitian  optimasi  waktu  pembelahan  sel  dan  suhu  kejutan  terhadap  tingkat keberhasilan  triploid  ikan  serukan  ( Osteochilus sp.)  dapat  disimpulkan  bahwa  umur  zigot  dan  suhu kejut mempengaruhi tingkat keberhasilan ginogenesis (triploidi) ikan serukan, dimana tingkat triploidi tertinggi diperoleh pada P3 (umur zigot 20 menit dan suhu kejut 42̊ C) setelah pembuahan dengan nilai rata-rata  60%  dan  berdampak  positif  terhadap  laju  pertumbuhan  harian  (LPH)  ikan  serukan ( Osteochilus sp.).

## DAFTAR PUSTAKA
Alawi,  Nuraini,  H.,  &  Sapriana.  (2009).  Induksi  Triploid  Ikan  Selais  ( Kryptopterus  lympok) Mengunakan Kejutan Panas. Jurnal Perikanan dan Kelautan. 14(1): 37-47.
Beaumont,  A.R.,  &  Hoare,  K.  (2003). Biotechnology  and  Genetics  in  Fisheries  and  Aquaculture . Oxford [GB]: Blackwell Science. hlm 158-160.
Berrill,  I.K.,  MacIntyre,  C.M.,  Noble,  C.,  Kankainen,  M.,  &  Turnbull,  J.F.  (2012).  Bio-economic Costs  and  Benefits  of  Using  Triploid  Rainbow  Trout  in  Aquaculture:  Reduced  Mortality. Aquacult Eco Mgmnt . 16(2):365 - 383.
Carman,  O.,  Oshiro,  T.,  &  Takashima,  F.  (1991).  Estimation  of  effective  condition  for  induction  of triploidy in goldfish Carassius auratus Linnaeus. J Tokyo Univ Fish. 78(2):127 - 135.
Carman, O. (1992). Cromosome Set Manipulation in Some Warm-Water Fish. Doctoral Thesis. Tokyo University of Fisheries. Tokyo. Hal 131.
Dunham,  R.A.  (2006). Aquaculture  and  Fisheries  Biotechnology:  Genetic  Approaches .  Cambridge [US]: CABI. hlm 372-376.
Effendi, M.I. (1997). Biologi Perikanan . Yayasan Pustaka Nusantara. Yogyakarta. Hal 134-187.
Hartono,  D.P.,  &  Witoko,  P.  (2012).  Pengaruh  Jarak  Waktu  Pemberian  Kejutan  Dingin  pada Pembentukkan  Individu  Triploid  Ikan  Patin  ( Pangasius sp). Jurnal  Penelitian  Pertanian Terapan . Politeknik Negeri Lampung. 12(3): 156-162.
Gheyas,  A.A.,  Mollah,  M.F.A.,  &  Hussain,  M.G.  (2001).  Triploid  Induction  in  Stinging  Catfish Heteropneutes fossilis Uisng Cold Shock. Asian Fisheries Science . 14(3):323-332.
Gjedrem,  T.,  &  Baranski,  M.  (2009). Selective  Breeding  in  Aquaculture:  An  Introduction .  London [GB]: Springer. hlm 221.
Haloho,  M.D.T.  (2015).  Efektivitas  Triploidisasi  dengan  Penetasan  dan  Suhu  Kejutan  Yang  Berbeda Pada  Ikan  Ingir-ingir  ( Mystus  nigriceps) . Skripsi. Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan Universitas Riau. Pekanbaru. hlm 44-57.
Howell,  W.M.,  &  Black,  D.A.,  (1980).  Controlled  Silver  Staining  of  Nucleolus  Organizer  Regions with Protective Colloidal Developer: a1-step methods. Experientia. 36(2):1014 - 1015.
Ibrahim,  Y.,  Soelistyowati,  D.T.,  &  Carman,  O.  (2017).  Triploid  Striped  Catfish  Pangasianodon hypophrhalmus:  Growth  Performance  and  Gonadal  Development. Jurnal  Akua  Indonesia . 16(1):76-82.
Kligerman,  A.D.,  &  Bloom,  S.E.  (1977).  Rapid  Chromosome  Preparations  from  Solid  Tissues  of Fishes. J Fish Res Board Can. 34(3):266 - 269.
Ulfa Zaleha et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (1), 57-64 (2021)
Lagler, K.F. (1970). Freshwater Fishery Biology. WM. C. Brown Comp. Publishers. Dubuque. Lowa. Hal 371-191.
Liu, S.J., Qin, Q.B., Xioa, J., Lu, W.T., Shen, J.M., Li, W., Liu, J.F., Duan, W., Zhang, C., Tao, M., Zhao, R.R., Yan, J.P., & Liu, Y. (2007).  The formation of the polyploid hybrids from different subfamily fish crossings and its evulotionary significance. Genetics . 176(2):1023-1034.
Muchlisin,  Z.A.,  Arfandi,  G.,  Adlim,  M.,  Fadli,  N.,  &  Sugianto.  (2014).  Induced  Spawning  of Seurukan Fish Osteochilus vittatus (Pisces: Cyprinidae) Using Ovaprim, Oxytocin and Chicken Pituitary Gland Extracts. AACL Bioflux . 7(5):412-418.
Mulyasari,  D.T.,  Soelistyowati,  A.H.,  Kristanto,  &  Kusmini,  I.I.  (2010). Karakteristik  Genetik  Enam Populasi  Ikan  Nilem  ( Osteochilus  hasselti )  di  Jawa  Barat. Jurnal  Riset  Akuakultur. 5  (2):175- 182.
Mukti,  A.T., Rustidja, Sumitro, S.B, & Djati, M.S. (2001). Poliploidisasi  Ikan Mas ( Cyprinus carpio L). Jurnal Biosin. 1(1): 17-25
Myers, P.R., Espinosa, C.S.P., Jones, G.S., Hammond, & Dewey, T.A.  (2014). The Animal Diversity Web (online). Accessed at http://animaldiversity.org.
Nam,  Y.K.,  Park,  I.S.,  &  Kim,  D.S.  (2004).  Triploid  hybridization  of  fast-growing  transgenic  mud loach Misgurnus mizolepis male to cyprinid loach Misgurnus anguillicaudatus female: the first performance  study  on  growth  and  reproduction  of  transgenic  polyploid  hybrid  fish.
Aquaculture . 231:559 - 572.
Nurasni,  A.  (2012).  Pengaruh  Suhu  dan  Lama  Kejutan  Panas  Terhadap  Triploidisasi  Ikan  Lele Sangkurian  ( Clarias  gariepinus ). Tesis  Universitas  Padjadjaran.  Sumedang .  Tidak Dipublikasikan. Hlm 34-41.
Park,  I.,  Nam,  Y.K.,  &  Kim,  D.S.  (2006).  Growth  performance,  morphometric  traits  and  gonad development  of  induced  reciprocal  diploid  and  triploid  hybrids  between  the  mud  loach ( Misgurnus  mizolepis Günther)  and  cyprinid  loach  ( Misgurnus  anguillicaudatus Cantor). Aquacult Res . 37(5):1246-1253.
Piferrer,  F.,  Beaumont,  A.,  Falguière,  J.C.,  Flajšhans,  M.,  Haffray,  P.,  &  Colombo,  L.  (2009). Polyploid  fish  and  shellfish:  production,  biology  and  applications  to  aquaculture  for performance improvement and genetic containment. Aquaculture . 293(7):125 - 156.
Sastrawibawa,  S.  (2003).  Jumlah  Kromosom dan  Anak  Inti  Ikan  Tawes  Diploid  ( Puntius gonionotus Blkr) . Jurnal Bionatura . 5(1):21-28.
Subagia,  J.,  Gustiano,  L.,  &  Winarlin.  (2006). Pelestarian  Ikan  Nilem  (Osteochilus  sp.)  Melalui Teknologi  Pembenihan. Lokakarya  Nasional  Pengelolaan  dan  Pelindungan  Sumber  Daya Genetikdi Indonesia. Hal:279-286.
Sukarti,  K.,  Djawat,  I.,  &  Fujaya,  Y.  (2006).  Pengaruh  Lama  Kejutan  Panas  Terhadap  Keberhasilan Triploidisasi Ikan Lele ( Clarias batrachus) . Jurnal Sains dan Teknologi. 6 (3):135-142.
Susilo, R.H., Farikhah, F., & Rahim, R.A. (2018). Analisis Jumlah Kromosom Pada Triploidisasi Ikan Mas  ( Cyprinus  carpio  linn )  Ras  Punten  Dengan  Lama  perendaman  Kejut  Suhu  Panas  Yang Berbeda. Jurnal Perikanan Pantura. Universitas Muhammadiyah Gresik. 1(1).76-88 Syandri, H. (2004). The Use of Osteochilus vittatus and Puntius javanicus Asa an Agen of Biological in Maninjau Lake. Journal of Natur Indonesia . 6(2):87-91.
Thorgaard,  G.H.,  &  S.K.  Allen  Jr.  (1987).  Chromosome  manipulation  and  markers  in  fisheries management.  In.  Ryman,  N.,  Utter,  F.  (Eds.),  Population  Genetics  and  Fishery  Management. University of Washington. Washington. US.