Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
The Effect of Delignification and Hydrolysis Process on Isolated Cellulose from Saba Banana Fruit Peel ( Musa acuminata × balbisiana)
Pengaruh Proses Delignifikasi dan Hidrolisis terhadap selulosa Hasil Isolasi dari Kulit Pisang Kepok ( Musa acuminata × balbisiana)
Annisa Fauzana *1 , Nadira Putri 2 , Wahyu Margi Sidoretno 3
1 Fakultas Farmasi, Universitas Andalas, Padang, Indonesia
2 Program Studi DIII Analis Farmasi dan Makanan, Universitas Abdurrab, Pekanbaru, Indonesia 3 Fakultas Farmasi dan Ilmu Kesehatan, Universitas Abdurrab, Pekanbaru, Indonesia 3 Email: annisafauzana@phar.unand.ac.id

## Abstract
Musa  acuminata  ×  balbisiana  fruit  peel  is  a  waste  that  can  be  utilized  to produce  a  biodegradable,  non-toxic,  and  stable  natural  cellulose.  Cellulose characteristics  depend  on  their  isolation  process,  such  as  delignification  and hydrolysis process, and their natural sources. This research aims to determine the effect  of  different  delignification  and  hydrolysis  process  on  characteristic  of isolated cellulose from Musa acuminata × balbisiana fruit peel. The isolation was conducted by different delignification process, which used sodium hydroxide with heating  at  80  C for  20  and  30  minutes,  and  hydrolysis  process  using  chloric acid  and  sulfuric  acid.  The  isolated  cellulose  then  was  characterized  using spectrophotometer  FT-IR.  The  result  showed  that  there  were  a  decrease  in absorption intensity, wave number shifts, and some missing peaks of the isolated cellulose by the delignification and hydrolysis process compared to the standard cellulose used.
Keywords:
Musa acuminata × balbisiana; cellulose; hydrolysis; delignification

## Abstrak
Kulit buah pisang Musa acuminata × balbisiana merupakan salah satu limbah yang  dapat  diolah  untuk  mendapatkan  selulosa  yang  merupakan  polimer alami dengan sifat mampu mengalami biodegradasi, tidak toksik dan stabil. Karakteristik  selulosa  dapat  dipengaruhi  oleh  proses  delignifikasi,  proses hidrolisis, dan sumber selulosa. Penelitian ini bertujuan untuk mengisolasi dan mengarakterisasi  selulosa  dari  kulit  buah  Musa  acuminata  ×  balbisiana dengan proses delignifikasi dan hidrolisis yang berbeda. Pada penelitian ini, proses  delignifikasi  dilakukan  dengan  penambahan  natrium  hidroksida  dan pemanasan pada suhu 80  C selama 20 dan 30 menit dan proses hidrolisis dilakukan dengan menggunakan asam klorida dan asam sulfat. Selulosa hasil isolasi kemudian ditentukan rendemennya dan karakteristiknya menggunakan spektrofotometer  FT-IR.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  terdapat perbedaan rendemen dan karakteristik selulosa yang diisolasi dengan proses delignifikasi  dan  hidrolisis  yang  berbeda.  Terdapat  penurunan  intensitas penyerapan,  pergeseran  bilangan  gelombang,  dan  tidak  munculnya beberapa puncak pada selulosa hasil isolasi dibandingkan dengan standar. Kata Kunci:
Musa acuminta X balbisiana, selulosa, hidrolisis, delignifikasi

## Article Info

## Article history
Received date: 2022-11-29 Revised date: 2022-12-07 Accepted date: 2023-01-17
Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
Annisa Fauzana and annisafauzana@phar.unand.ac.id

## PENDAHULUAN
Selulosa  merupakan  komponen  terbanyak yang terkandung dalam kebanyakan tumbuhan,  sehingga  menjadi  sumber  polimer utama  dari  bahan  yang  dapat  diperbaharui, yang  tersusun  atas  gugus  hidroksil  yang mengakibatkan  terbentuknya  ikatan  hidrogen yang kuat [1]. Selulosa menjadi bahan penting dalam pengembangan polimer karena selulosa  merupakan  makromolekul  yang tersusun  atas  gugus  glukosa  berulang  dengan struktur,  reaktivitas,  dan  kegunaan  yang spesifik  dan  sekaligus  sangat  luas  dan beragam  [2].  Kemampuan  reaksi  dan  sifat selulosa  ditentukan  oleh  proses  isolasi  yang digunakan,  jumlah  ikatan  hidrogen  inter-  dan intra  molekuler,  panjang  rantai,  persebaran panjang  rantai,  kristalinitas  dan  persebaran gugus  fungsi  pada  sepanjang  rantai  polimer [3], [4], [5] .
Pada  tumbuhan,  selulosa  terdapat  pada dinding  sel  dan  berperan  dalam  menjaga kekakuan  dinding  sel  [6].  Salah  satu  bagian tumbuhan  yang  memiliki  potensi  sebagai sumber  selulosa  adalah  kulit  pisang,  di  mana tanaman  pisang,  seperti Musa  acuminata  × balbisiana, menjadi  salah  satu  agro-industri utama  dan  menghasilkan  kulit  pisang sebagai limbah  [7].  Isolasi  dari  bahan  alam  ini diharapkan  akan  menghasilkan  selulosa sebagai polimer alami yang dapat mengalami biodegradasi  dengan  sumber  bahan  yang mudah  didapatkan,  dan  bersifat  non-toksik dan stabil [8], sehingga dapat digunakan oleh berbagai bidang, salah satunya pada bidang kefarmasian.
Terdapat  beberapa  metode  yang  digunakan untuk isolasi selulosa dari bahan alam, seperti hidrolisis  menggunakan  asam  atau  basa. Proses  hidrolisis  diawali  dengan  delignifikasi. Walaupun  pengaruh  delignifikasi  terhadap struktur  selulosa  belum  diketahui  secara menyeluruh, tetapi diketahui bahwa delignifikasi  secara  kimia  mengakibatkan perubahan  pada  jaringan,  sel,  dan  struktur dinding  sel  tumbuhan.  Selain  penggunaan
delignifikasi  kimia  memiliki  afinitas  yang tinggi  terhadap  selulosa  atau  lignin, penggunaan bahan ini juga dapat mempengaruhi  struktur  hemiselulosa  yang berdekatan  dengan  lignin  [9].  Sehingga proses  delignifikasi  dapat  mempengaruhi selulosa hasil isolasi dari bahan alam. Beberapa  asam  dapat  digunakan  pada proses  hidrolisis,  seperti  kuat  (seperti:  asam klorida  dan  asam  sulfat)  dan  asam  organik (seperti: asam sitrat dan asam maleat). Akan tetapi,  penggunaan  asam  sulfat  untuk hidrolisis  diketahui  dapat  menghilangkan struktur amorf pada selulosa [10], sedangkan penggunaan asam sitrat mendapatkan  rendemen  yang  rendah  [11]. Asam  klorida  merupakan  asam  kuat  yang paling  umum  digunakan  untuk  proses hidrolisis  pada  isolasi  selulosa  [12].  Selain jenis asam atau basa yang digunakan, lama waktu  hidrolisis  diperkirakan  berpengaruh terhadap kristalinitas selulosa dan kemampuannya untuk membentuk suspensi di dalam  air  [1].  Pada  penelitian  ini,  akan diisolasi  selulosa  dari  kulit  pisang  kapok ( Musa acuminata × balbisiana) menggunakan dua jenis asam kuat yaitu asam klorida dan asam sulfat dengan variasi waktu delignifikasi.  Karakteristik  masing-masing selulosa  yang  diperoleh  kemudian  dilihat menggunakan FTIR.

## METODE

## Alat dan Bahan
Peralatan  yang  digunakan  pada  penelitian ini  adalah  alat-alat  gelas, hot  plate  stirrer , dan  spektrofotometer  FT-IR.  Sedangkan bahan  yang  digunakan  adalah  sampel  kulit Musa  acuminata  ×  balbisiana, mikrokristalin selulosa, asam klorida 2 N, asam sulfat 2 N, natrium  hipoklorit  5%,  natrium  hidroksida, etanol, iodin 2%, asam asetat 0,5 N, dan air suling.
Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
Annisa Fauzana and annisafauzana@phar.unand.ac.id

## Prosedur Kerja Penyiapan sampel
Sebanyak 4000 g sampel dicuci hingga bersih untuk  membersihkan  kulit  dari  kotoran  yang menempel  pada  kulit  pisang  kepok.  Lalu sampel dipotong
kecil-kecil untuk
mempercepat proses pengeringan dan dikeringkan  pada  suhu  kamar.  Pengeringan dilakukan  untuk  mengurangi  kadar  air sehingga  menjamin  mutu  dalam  penyimpanan dan  mencegah  pertumbuhan  jamur.  Simplisia yang didapat kemudian diserbuk menggunakan  blender  sebelum  dilakukan proses  isolasi.  Tujuan  dari  pengecilan  ukuran simplisia  ini  adalah  untuk  meningkatkan  luas permukaan padatan sehingga meningkat pula persentuhan  cairan  penyari  dengan  sampel [13].
Isolasi selulosa Selulosa  pada  sampel  diisolasi  dengan tahapan  delignifikasi, bleaching dan  hidrolisis. Sebanyak  10  gram  sampel  didelignifikasi menggunakan natrium hidroksida 1M (120 ml) pada  suhu  80°C  selama  20  dan  30  menit, yang  kemudian  disaring  dan  dicuci  hingga filtrat  jernih.  Masing-masing  residu  yang diperoleh kemudian di bleaching menggunakan 140 ml natrium hipoklorit 5% (v/v) pada suhu 80°C selama 18 menit, lalu disaring dan dicuci hingga  filtrat  jernih.  Selanjutnya  residu dihidrolisis  dengan  perlakuan  dua  jenis  asam kuat asam klorida 2 N dan asam sulfat 2 N.
Proses hidrolisis
dilakukan dengan menambahkan  sampel  hasil  delignifikasi  dan bleaching dengan  61  ml  asam  klorida  2  N, kemudian  dilakukan  pengadukan  dengan hot plate  stirrer selama  30  menit  pada  suhu kamar.  Suspensi  selulosa  dari  limbah  kulit pisang  dalam  asam  kuat  kemudian  disaring dan  residu  dicuci  hingga  pH  filtrat  mencapai 7. Selanjutnya selulosa dikeringkan pada suhu 50°C  selama  24  jam,  kemudian  ditimbang berat akhirnya. Tahapan hidrolisis yang sama dilakukan  untuk  perlakuan  jenis  asam  sulfat 2 N. Jumlah selulosa yang didapatkan kemudian dihitung rendemennya [14].

## Analisis selulosa menggunakan spektrofotometer FTIR
Sebanyak 0,2 mg selulosa dicampur dengan 2  mg  KBr  dan  dibentuk  menjadi  pellet. Kemudian  sampel  dianalisis  pada  bilangan gelombang 4000-400 cm -1 .

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Dari  proses  isolasi  yang  dilakukan, didapatkan  selulosa  yang  berwarna  putih kecokelatan  pada  seluruh  perlakukan (Gambar 1) dengan rendemen paling tinggi didapatkan  pada  hidrolisis  menggunakan asam  sulfat  dengan  delignifikasi  selama  30 menit  (Tabel  1).  Hasil  karakterisasi  selulosa hasil  isolasi  menggunakan  spektrofometer FT-IR dapat dilihat pada Tabel 2.
Gambar 1. Hasil isolasi selulosa dari sampel kulit

## Musa acuminata × balbisiana
Tabel 1. Nilai rendemen hasil isolasi selulosa pada keempat perlakuan sampel
Nilai Rendemen (%) Asam klorida Asam sulfat Delignifikasi 20 menit 22 42 Delignifikasi 30 menit 31 35
Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
Tabel 2. Bilangan gelombang selulosa hasil isolasi dan pembanding mikrokristalin selulosa
Gugus fungsi Bilangan gelombang (cm -1 ) MCS HCl20 HCl30 AS20 AS30 -OH 3331 3604 3641 3609 3475 3283 C-C 2894 2917 2917 2870 2916 H2O 1633 1604 1645 1653 1653 -CH2, -CH, -OH, C-O 1428 1367 1334 1027 896 1465 1369 - 1019 887 - - 1338 - 868 1411 - - 1118 888 - 1378 1234 1045 896 SK 1420- 1430 1465 - 1411 - SA 897 - - - - Dari  hasil  isolasi,  didapatkan  rendemen selulosa  kecil  dari  50%,  yang  kemungkinan disebabkan oleh proses delignifikasi menggunakan  basa  kuat  pada  panas  tinggi dan bleaching menggunakan natrium hipoklorit. Penggunaan  natrium  hipoklorit  pada  awal isolasi  penting  untuk  melepaskan  lignin,  di mana di alam serat merupakan komposit yang terdiri  dari  selulosa,  lignin,  dan  hemiselulosa [15].  Akan  tetapi,  diketahui  penggunaan natrium  hipoklorit  juga  akan  menurunkan kadar selulosa dan lignin pada sampel bahan alam [1].
Selulosa  memiliki  regangan  spesifik  pada bilangan  gelombang  tertentu.  Puncak  pada bilangan  gelombang  rentang  3660  –  2900 cm -1 (Tabel  2)  merupakan  karakteristik  yang menunjukkan  getaran  ikatan  O-H  dan  C-H pada  polisakarida.  Puncak  3331  cm -1 dikarakterisasikan  sebagai  getaran  gugus  - OH  pada  polisakarida.  Selanjutnya,  puncak pada  bilangan  gelombang  2894  cm -1 menunjukkan  regangan  -CH  seluruh  konstituen hidrokarbon pada polisakarida. Selulosa juga memberikan  puncak  pada  rentang  bilangan gelombang  1630  –  900  cm -1 (Tabel  2),  di mana  puncak  pada  bilangan  gelombang
1633  cm-1  menandakan  adanya  getaran molekul air yang diserap oleh selulosa  [16], [17].  Selanjutnya,  selulosa  memberikan puncak  pada  bilangan  gelombang  1428, 1367, 1334, 1027 cm -1 dan 896 cm -1 yang menandakan  adanya  getaran  peregangan dan penekukan oleh ikatan -CH 2 dan -CH, - OH dan C-O [18][19]. Jumlah struktur kristal pada  selulosa  ditandai  dengan  munculnya puncak  pada  bilangan  gelombang  rentang 1420  –  1430  cm -1 ,  dan  struktur  amorf ditandai pada bilangan gelombang 897 cm - 1 [2].
Perbedaan  waktu  delignifikasi  dan  proses hidrolisis mempengaruhi hasil isolasi selulosa. Secara  umum,  selulosa  hasil  isolasi  memiliki karakteristik  serapan  IR  sesuai  dengan pembanding,  walaupun  terdapat  beberapa perbedaan  seperti  pada  pergeseran  dan intensitas puncak. Pada sampel, penyerapan terjadi  pada  rentang  bilangan  gelombang 3660  –  2800  cm -1 dan  1650  –  400  cm -1 (Tabel  2).  Ditemukan  perbedaan  intesitas pada  beberapa  bilangan  gelombang  serta terdapat  puncak  baru  atau  tidak  adanya regangan  yang  muncul  jika  dibandingkan dengan  spektrum  mikrokristalin  selulosa. Bilangan  gelombang  dan  puncak  selulosa pada  FTIR  dapat  mengalami  pergeseran dengan  berbedanya  sumber  selulosa  yang digunakan [20].
Pada  hasil  isolasi  menggunakan  asam klorida  dengan  delignifikasi  selama 20  dan 30  menit  terdapat  puncak  pada  bilangan gelombang 3604 dan 3641 cm -1 dan isolasi menggunakan  asam  sulfat  20  dan  30  menit pada  3609  dan  3475  cm -1 ,  yang menandakan  adanya  regangan  O-H  pada selulosa  hasil  isolasi.  Ikatan  hidrogen berperan  penting  pada  berbagai  sifat selulosa, lignin, dan serat dari alam [5], [21]. Diperkirakan  terdapat  kandungan  lignin pada  hasil  isolasi  menggunakan  asam klorida  selama 20  dan  30  menit, dan  asam sulfat  selama  20  menit  karena  regangan 3500 – 3600 cm -1 kemungkinan
Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
Annisa Fauzana and annisafauzana@phar.unand.ac.id
menunjukkan  adanya  ikatan  hidrogen  dari gugus  fenol  pada  lignin  [22].  Selain  pada bilangan  gelombang  3342  cm -1 ,  regangan ikatan hidrogen pada selulosa juga ditunjukkan  dengan  adanya  serapan  pada rentang  bilangan  gelombang  3400  –  3500 cm -1 seperti  yang  juga  ditemukan  pada selulosa hasil isolasi menggunakan asam sulfat dengan  waktu  delignifikasi  selama  30  menit, yaitu  pada  3475  cm -1 [2].  Ikatan  hidrogen merupakan  salah  satu  ikatan  pada  selulosa yang mempengaruhi sifat fisika dan kimia dari selulosa  tersebut.  Kekuatan  ikatan  hidrogen tergantung  pada  jumlahnya  dalam  suatu senyawa  yang  tersusun  berdasarkan  pola tertentu,  karena  ikatan  hidrogen  tunggal merupakan  ikatan  yang  lemah  dan  dapat dibentuk  dan  diputuskan  dengan  mudah. Ketika  suatu  ikatan  hidrogen  diputuskan, ikatan  tersebut  dapat  dibentuk  kembali  yang menunjukkan  fleksibilitas  struktur  suatu  bahan, seperti pada selulosa [23].
Terdapat  perbedaan  area  serapan  pada selulosa hasil isolasi jika dibandingkan dengan standar  pada  rentang  bilangan  gelombang 1650  –  400  cm -1 (Tabel  2)  yang menggambarkan  regangan  -CH 2 ,  -CH,  -OH, dan C-O pada selulosa [20]. Di mana selulosa hasil  isolasi  menggunakan  asam  klorida selama  20  menit  dan  asam  sulfat  selama  30 menit menunjukkan karakteristik paling mendekati  karakteristik  selulosa  pembanding. Sedangkan, hasil isolasi menggunakan hidrolisis  asam  klorida  dengan  delignifikasi selama  30  menit  dan  asam  sulfat  selama  20 menit  menunjukkan  hilangnya  beberapa puncak, seperti pada 1428, 1367, dan  1027 cm -1 untuk  hidrolisis  asam  klorida  dengan delignifikasi selama 30 menit dan pada 1367 dan  1334  cm -1 untuk  hidrolisis  asam  sulfat selama  20  menit.  Sedangkan,  pergeseran bilangan gelombang dan penurunan intensitas penyerapan  terjadi  pada  seluruh  hasil  isolasi dengan metode yang dicobakan.
Tidak  munculnya  puncak  pada  beberapa perlakukan kemungkinan salah satunya
disebabkan  oleh  penguraian  selulosa  yang dipicu  oleh  hidrolisis  menggunakan  asam sulfat  jika  dilakukan  pada  suhu  tinggi, karena  selulosa  memiliki  keterbatasan stabilitas  pada  suhu  tinggi  [24].  Degradasi ini  dapat  dihambat  dengan  menggunakan asam encer atau dengan hidrolisis pada suhu rendah, akan tetapi rendemen selulosa yang didapatkan dengan metode ini akan sangat rendah [25].
Pada  selulosa  hasil  isolasi,  tidak  ditemukan adanya serapan pada bilangan gelombang 897  cm -1 dan  pada  rentang  1420  –  1430 cm -1 yang  dipengaruhi  oleh  komposisi struktur  amorf  dan  kristalin  pada  selulosa tersebut.  Perbedaan  ini  mempengaruhi tingginya  kekuatan  regangan  dan  stabilitas termal  selulosa  [26].  Selulosa  dari  sampel kemungkinan mengandung hemiselulosa yang  tinggi  yang  dihubungkan  dengan kelembapan selulosa yang akhirnya mempengaruhi  sifat  degradasi.  Serat  yang mengandung  hemiselulosa  yang  tinggi  akan menyerap  kelembapan  yang  tinggi  dan dapat terdegradasi pada suhu yang rendah [2],  [27].  Hilangnya  struktur  amorf  ini  juga dimungkinkan  karena  putusnya  ikatan glikosida selama proses hidrolisis menggunakan  asam  sulfat,  sedangkan bagian  kristal  akan  tetap  utuh  [12].  Tidak adanya struktur amorf  akan mengakibatkan perubahan  indeks  kristalinitas,  struktur morfologi  permukaan,  dan  stabilitas  termal suatu  serat  [28].  Kehilangan  struktur  amorf ini  kemungkinan  disebabkan  oleh  interaksi antara penghubung  -glikosida dan unit-unit glukosa pada selulosa [29].
Pada  beberapa  bahan  alam  diketahui bahwa  kristalinitas  selulosa  akan  meningkat dengan  semakin  lamanya  waktu  hidrolisis [1].  Pada  selulosa  hasil  isolasi  ditemukan terdapat pergeseran puncak struktur kristalin menjadi  1465  cm -1 menggunakan  asam klorida  dengan  delignifikasi  selama  20 menit  dan  1411  cm -1 menggunakan  asam sulfat  selama  20  menit.  Sedangkan  dari
Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
Annisa Fauzana and annisafauzana@phar.unand.ac.id
kedua  perlakukan  lain  tidak  ditemukan adanya  puncak  yang  menandakan  struktur kristalin  pada  selulosanya.  Lamanya  waktu paparan  selulosa  terhadap  asam  kuat  dapat menurunkan  kristalinitas  selulosa  karena struktur  kristalin  dapat  mengalami  hidrolisis sehingga  mengakibatkan  perubahan  struktur, yang  menjadi  salah  satu  kekurangan  jika menggunakan  asam  kuat  pada  proses hidrolisis  [30].  Selain  itu,  derajat  kristalinitas dan  ukuran  area  kristalin  pada  selulosa tergantung  pada  jenis  bahan  sumber  selulosa dan proses isolasi. Dengan menurunnya indeks kristalinitas  serat,  maka  kekakuan  dan kekuatan regangan serat juga menurun [12].

## SIMPULAN
Selulosa  dan  diisolasi  dari  kulit Musa acuminata  ×  balbisiana menggunakan  basa natrium  hidroksida  pada  proses  delignifikasi dan  asam  klorida  dan  asam  sulfat  pada proses  hidrolisis  dengan  rendemen  lebih  dari 20%.  Lama  waktu  pemanasan pada delignifikasi  dan  hidrolisis  berpengaruh terhadap  karakter  selulosa  hasil  isolasi  jika dibandingkan  dengan  standar  mikrokristalin selulosa.  Salah  satu  perbedaan  mendasar adalah  tidak  ditemukannya  struktur  amorf pada  keempat  perlakuan  dan  tidak  ada struktur  kristalin  pada  hidrolisis  asam  klorida dengan  pemanasan  delignifikasi  selama  30 menit  dan  asam  sulfat  selama  20  menit. Sedangkan  pada  kedua  proses  lainnya ditemukan pergeseran puncak pada karakterisasi  menggunakan  spektrofotometer
FT-IR.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] R.  A.  Ilyas et  al. ,  ―Effect  of  hydrolysis time  on  the  morphological,  physical, chemical, and thermal behavior of sugar palm  nanocrystalline  cellulose  (Arenga pinnata  (Wurmb.)  Merr),‖ Text.  Res.  J. , vol. 91, no. 1–2, pp. 152–167, 2021.
[2] M. Poletto, H. L. Ornaghi Júnior, and A. J.  Zattera,  ―Native  cellulose:  Structure,
characterization and thermal properties,‖ Materials  (Basel). ,  vol.  7, no. 9, pp. 6105–6119, 2014.
[3] M.  Åkerholm,  B.  Hinterstoisser,  and  L. Salmén,  ―Characterization  of  the crystalline  structure  of  cellulose  using static and dynamic FT-IR spectroscopy,‖ Carbohydr.  Res. ,  vol. 339, no. 3, pp. 569–578, 2004.
[4] D. Klemm, B. Heublein, H. P. Fink, and
A.  Bohn,  ―Cellulose:  Fascinating biopolymer  and  sustainable  raw material,‖ Angew.  Chemie  -  Int.  Ed. , vol.  44,  no.  22,  pp.  3358–3393, 2005.
[5] S.  Y.  Oh et  al. ,  ―Crystalline  structure analysis  of  cellulose  treated  with sodium hydroxide and carbon dioxide by  means  of  X-ray  diffraction  and FTIR  spectroscopy,‖ Carbohydr.  Res. , vol.  340,  no.  15,  pp.  2376–2391, 2005.
[6] F.  Hemmati,  S.  M.  Jafari,  M. Kashaninejad, and M. Barani Motlagh, ―Synthesis  and  characterization  of cellulose  nanocrystals  derived  from walnut  shell  agricultural  residues,‖ Int. J.  Biol.  Macromol. ,  vol.  120,  pp. 1216–1224, 2018.
[7] R.  Zuluaga,  J.  L.  Putaux,  J.  Cruz,  J. Vélez,  I.  Mondragon,  and  P.  Gañán, ―Cellulose  microfibrils  from  banana rachis: Effect of alkaline treatments on structural and morphological features,‖ Carbohydr.  Polym. ,  vol.  76, no. 1, pp. 51–59, 2009.
[8] P.  Tingaut,  T.  Zimmermann,  and  G. Sèbe,  ―Cellulose  nanocrystals  and microfibrillated  cellulose  as  building blocks  for  the  design  of  hierarchical functional  materials,‖ J.  Mater.  Chem. , vol.  22,  no.  38,  pp.  20105–20111, 2012.
[9] T.  Keplinger,  F.  K.  Wittel,  M. Rüggeberg,  and  I.  Burgert,  ―Wood Derived Cellulose Scaffolds—
Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
Processing and Mechanics,‖ Adv. Mater. , vol. 33, no. 28, pp. 1–19, 2021.
[10]  R.  A.  Ilyas,  S.  M.  Sapuan,  and  M.  R.
Ishak, ―Isolation and characterization of nanocrystalline  cellulose  from  sugar palm fibres (Arenga Pinnata),‖
Carbohydr.  Polym. ,  vol.  181,  no. October 2017, pp. 1038–1051, 2018.
[11]  W.  Liu et  al. ,  ―Highly  Efficient  and
Sustainable  Preparation  of  Carboxylic and Thermostable Cellulose Nanocrystals via FeCl3-Catalyzed Innocuous  Citric  Acid  Hydrolysis,‖ ACS Sustain.  Chem.  Eng. ,  vol.  8,  no.  44,  pp. 16691–16700, 2020.
[12]  D. Trache, M. H. Hussin, M. K. M. Haafiz, and  V.  K.  Thakur,  ―Recent  progress  in cellulose  nanocrystals:  Sources  and production,‖ Nanoscale , vol. 9, no. 5, pp. 1763–1786, 2017.
[13]  A.  Fauzana,  R.  Rohmawati,  and  M.  A. Herly,  ―Aktivitas  Antioksidan  Ekstrak Kulit  Garcinia  Mangostana  L.  Pada Variasi  Suhu  Pengeringan,‖ JOPS (Journal  Pharm.  Sci. ,  vol.  4,  no.  2,  pp. 37–43, 2021.
[14]  M. Jonoobi et al. , ―Different preparation methods and properties of nanostructured  cellulose  from  various natural  resources  and  residues:  a review,‖ Cellulose ,  vol.  22,  no.  2,  pp. 935–969, 2015.
[15]  A.  Dufresne,  ―Nanocellulose:  A  new ageless bionanomaterial,‖ Mater. Today , vol. 16, no. 6, pp. 220–227, 2013.
[16]  M. Poletto, V. Pistor, M. Zeni,  and  A. J. Zattera,  ―Crystalline  properties  and decomposition kinetics of cellulose fibers in  wood  pulp  obtained  by  two  pulping processes,‖ Polym.  Degrad.  Stab. ,  vol. 96, no. 4, pp. 679–685, 2011.
[17]  M. F. Rosa et al. , ―Cellulose nanowhiskers  from  coconut  husk  fibers: Effect of preparation conditions on their thermal  and  morphological  behavior,‖ Carbohydr.  Polym. ,  vol.  81,  no.  1,  pp.
83–92, 2010.
[18]  K.  Fackler,  J.  S.  Stevanic,  T.  Ters,  B. Hinterstoisser, M. Schwanninger, and L. Salmén,  ―FT-IR  imaging  microscopy  to localise  and  characterise  simultaneous and  selective  white-rot  decay  within spruce wood cells,‖ Holzforschung , vol.
65, no. 3, pp. 411–420, 2011.
[19]  F. Xu, J. Yu, T. Tesso, F. Dowell, and D. Wang,  ―Qualitative  and  quantitative analysis  of  lignocellulosic  biomass using  infrared  techniques:  A  mini- review,‖ Appl.  Energy ,  vol.  104,  pp. 801–809, 2013.
[20]  V.  Hospodarova,  E.  Singovszka,  and N.  Stevulova,  ―Characterization  of Cellulosic Fibers by FTIR Spectroscopy for  Their  Further  Implementation  to Building  Materials,‖ Am.  J.  Anal. Chem. , vol. 09, no. 06, pp. 303–310,
2018.
[21]  M. C. Popescu, C. M. Popescu, G. Lisa, and  Y.  Sakata,  ―Evaluation  of morphological  and  chemical  aspects of  different  wood  species  by spectroscopy and thermal methods,‖ J. Mol.  Struct. ,  vol.  988,  no.  1–3,  pp. 65–72, 2011.
[22]  C. M. Popescu, M. C. Popescu, and C.
Vasile, ―Structural changes in biodegraded  lime  wood,‖ Carbohydr. Polym. ,  vol.  79,  no.  2,  pp.  362–372, 2010.
[23]  M. Wohlert, T. Benselfelt, L.
Wågberg, I. Furó, L. A. Berglund, and J. Wohlert, ―Cellulose and the role of hydrogen  bonds:  not  in  charge  of everything,‖ Cellulose ,  vol.  29,  no.  1, pp. 1–23, 2022.
[24]  B.  A.  Frost  and  E.  Johan  Foster,
―Isolation of thermally stable cellulose nanocrystals from spent coffee grounds via phosphoric acid hydrolysis,‖ J.  Renew.  Mater. ,  vol.  8, no. 2, pp. 187–203, 2020.
[25]  J.  Lazko et  al. ,  ―Acid-free  extraction
Jurnal Proteksi Kesehatan Vol.11, No.2, November 2022, pp. 86-93 ISSN 2715-1115 (Online), ISSN 2302 – 8610 (Print)
Annisa Fauzana and annisafauzana@phar.unand.ac.id
of  cellulose  type  I  nanocrystals  using Brønsted  acid-type  ionic  liquids,‖ Nanocomposites ,  vol.  2,  no.  2,  pp.  65– 75, 2016.
[26]  E.  Gümüskaya,  M.  Usta,  and  H.  Kirci, ―The  effects  of  various  pulping conditions  on  crystalline  structure  of cellulose  in  cotton  linters,‖ Polym. Degrad. Stab. , vol. 81, no. 3, pp. 559– 564, 2003.
[27]  H. L. Ornaghi, M. Poletto, A. J. Zattera, and  S.  C.  Amico,  ―Correlation  of  the thermal  stability  and  the  decomposition kinetics  of  six  different  vegetal  fibers,‖ Cellulose ,  vol.  21,  no.  1,  pp.  177–188, 2014.
[28]  R.  M.  Sheltami,  I.  Abdullah,  I.  Ahmad, A.  Dufresne,  and  H.  Kargarzadeh, ―Extraction  of  cellulose  nanocrystals from  mengkuang  leaves  (Pandanus tectorius),‖ Carbohydr. Polym. , vol. 88, no. 2, pp. 772–779, 2012.
[29]  F. Luzi et al. , ―Optimized extraction of cellulose  nanocrystals  from  pristine and  carded  hemp  fibres,‖ Ind.  Crops Prod. , vol. 56, pp. 175–186, 2014.
[30]  J.  Geboers,  S.  Van  de  Vyver,  K. Carpentier,  P.  Jacobs,  and  B.  Sels, ―Efficient  hydrolytic  hydrogenation  of cellulose  in  the  presence  of  Ru-loaded zeolites  and  trace  amounts  of  mineral acid,‖ Chem. Commun. , vol. 47, no. 19, pp. 5590–5592, 2011.