## POLA PERCABANGAN RANTING BAMBU APUS
[ Gigantochloa apus (J.A. & J.H. Schultes) Kurz.] DI ALAM

## Saifudin, Nisyawati
Departemen Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Indonesia, Depok nisya57.ns@gmail.com; nsywt@yahoo.com

## Abstract
Third nodus from branch of Gigantochloa apus were used as sampel in the making of histologic preparat. The preparat were made using parafin method with safranin-fast green dye series (Saa 1958, with modification).  In the  slicing  phase,  sampel  were  sliced  verticaly  (cross  section)  and  horizontaly  (longitudinal  section).  The vertical  preparat  were  used  to  observe  the  formation  of  prophylls  in  nodus  tip,  meanwhile  the  horizontal preparat  were  used  to  observe  the  position  of  bud  in  nodus  tip.  Based  on  observation  in  vertical  preparat, prophylls’ formation shows bud in amount 1,2, and 3. Meanwhile, observation in horizontal preparat shows that the  second  and  third  bud  in  each  nodus  is  come  from  first  nodus.  In  summary,  branch  complement  in  branch nodus of G. apus in nature is come from one primary bud that can make another bud (secondary bud). So based on  that  branch  complement  forming,  we  were  able  to  know  that  branching  pattern  of  G.  apus  is  single branching.
Keywords : branch complement; branching pattern; Gigantochloa apus; parafin method

## PENDAHULUAN
Bambu  merupakan  sumber  daya  alam yang  sangat  potensial  di  daerah  tropis  yang diperkirakan  sekitar  1000  spesies  (Dransfield  & Wijaya, 1995) - 1.500 spesies (Bystriakova et al., 2003)  yang  terdistribusi  ke  dalam  lebih  dari  60- 80  genus  di  dunia.  Di  Asia  Tenggara  tersebar sekitar  200  spesies dengan  20  genus (Dransfield & Wijaya, 1995). Gigantochloa apus merupakan salah satu spesies tanaman bambu yang memiliki banyak  manfaat  bagi  manusia. G . apus biasa digunakan  sebagai  bahan  bangunan,  bahan kerajinan  tangan,  bahan  pembuat  kertas  ( pulp ), alat musik tradisional, furniture , obat dan sebagai tanaman  penahan  erosi  (Dransfield  &  Widjaja  , 1995;  Mohmod  &  Liese,  1995;  Othman  & Mohmod,  1995;  Subramanian,  1995;  Agung  & Hardini,  2002).  Manfaat G . apus yang  banyak, menjadikan  permintaan  terhadap G . apus , terutama  untuk  keperluan  industri,  semakin meningkat.    Hal  tersebut  kemudian  mendorong
dilakukannya  berbagai  upaya  perbanyakan G . apus (Banik, 1995).
Gigantochloa  apus dapat  diperbanyak dengan cara generatif maupun vegetatif.  Adapun perbanyakan  secara  vegetatif,  lebih  sering dilakukan daripada perbanyakan secara generatif (McClure, 1967; Lembaga Biologi – LIPI, 1980; Banik,  1995;  Dransfield  &  Widjaja  1995;  Aziz, 1997).  Perbanyakan  vegetatif G.  apus telah dilakukan baik melalui kultur ex vitro maupun in vitro .    Berdasarkan  kultur in  vitro ,  diketahui bahwa  jumlah  maksimal  tunas  aksilar  yang berhasil  diinduksi  adalah  tiga  tunas  per  nodus (Purbaningsih et  al., 2002;  Rahayu,  2003; Prihatini, 2004; Prasetyaningtyas, 2005; Wardah, 2005).    Sementara  itu,  berdasarkan  pengamatan di  alam,  jumlah  tunas  terlihat  dapat  mencapai lebih  dari  3  di  tiap  nodus.    Perbedaan  tersebut, telah  mendorong  para  peneliti  di  bidang  kultur in  vitro untuk  dapat  meningkatkan  jumlah  tunas yang  terbentuk  di  tiap  nodus.    Namun  sampai saat  ini,  belum  diketahui  apakah  tunas-tunas
yang terlihat di alam, berasal dari satu nodus atau tidak.    Oleh  karena  itu,  perlu  dilakukan penelitian terhadap pola percabangan G. apus di alam.
Menurut Wong (1995a), pola percabangan tanaman  bambu di  alam,  ditentukan oleh karakteristik  tunas-tunas  yang  terdapat  pada  tiap nodus  tanaman  bambu  ( branch  complement ). Sementara  itu,  Usui  (1987),  menyatakan  bahwa untuk  dapat  mempelajari branch  complement , perlu  dilakukan  pengamatan  terhadap  susunan prophylls yang  membungkus  mata  tunas  pada nodus. Prophylls merupakan  organ  daun pertama  dari  tunas  aksilar  (Esau  1965).    Karena karakteristik  struktur  dan  posisinya, prophylls sangat  bagus  digunakan  sebagai  penanda  asal percabangan (Wong, 1995b).
Penelitian  terhadap  susunan prophylls , pertama kali dilakukan oleh Usui (1957) dengan menghasilkan  diagram  sayatan  melintang  dan diagram branch  complement nodus  tengah  dari enam  kelompok  genus bambu Jepang (McClure, 1966).    Hasil  tersebut,  kemudian  menjadi  acuan bagi  banyak  penelitian  yang  berkaitan  dengan pola  percabangan  bambu.    Salah  satunya  ialah Wenyue et  al., (1987),  yang  melakukan penelitian  secara  mikroskopis  terhadap  pola percabangan  bambu  monopodial,  khususnya pada  spesies  yang  termasuk  ke  dalam  genus Arundinaria , Indocalamus , Phyllostachys ,  dan
Sinobambusa .    Berdasarkan  penelitian  Wenyue et  al.. tersebut,  diketahui  bahwa  terdapat  empat tipe  pola  percabangan  bambu  monopodial,  yaitu percabangan tunggal ( single branching ), percabangan ganda ( double branching ), percabangan tiga ( triple branching ), dan percabangan banyak ( multiple branching ).
Selanjutnya,  dari  hasil  penelitian  Usui  maupun Wenyue et  al. akan  digunakan  sebagai  acuan untuk  penelitian  pola  percabangan G.  apus di alam.

## METODOLOGI
1. Pembuatan Sediaan Histologis
Telah  dilakukan  pengamatan  pendahuluan terhadap  jumlah  pembentukkan  mata  tunas  pada tiap nodus ranting G. apus di alam.  Berdasarkan pengamatan  tersebut,  diketahui  bahwa  nodus ranting  yang  memiliki  jumlah  pembentukkan mata  tunas  terbanyak  adalah  nodus  ranting ketiga.  Hasil tersebut kemudian dijadikan acuan dalam  pengambilan  sampel  untuk  pembuatan sediaan  histologis.    Pada  penelitian  ini,  sediaan histologis  dibuat  dengan  metode  parafin  (Sass, 1958).
2. Pengambilan Sampel
Gigantochloa  apus merupakan  bambu simpodial  yang  berasal  dari  Burma  (Myanmar) dan  sekarang  tersebar  luas  di  seluruh  kepulauan Indonesia (Lembaga Biologi – LIPI, 1980).  Pada penelitian, G. apus diperoleh dari rumpun bambu yang  tumbuh  di  daerah  Kebun  Raya  Bogor. Bagian  tanaman G.  apus yang  diambil  sebagai sampel  adalah  nodus  ketiga  dari  ranting  primer yang  belum  memiliki  anak  ranting.    Ranting primer  tersebut  harus  memiliki  panjang  75--110 cm,  mempunyai  minimal  5--8  nodus,  dan  5--7 helai daun.
Nodus  ketiga  ranting  dipisahkan  dari bagian  ranting  lain  dengan  cara  memotongnya hingga  berukuran  panjang  sekitar  1  cm.    Pada penelitian  ini,  jumlah  potongan  nodus  ketiga ranting  yang  dijadikan  sampel  pembuatan sediaan histologis adalah sebanyak 10.
3. Fiksasi
Fiksasi  dilakukan  dengan  cara  merendam sampel dalam larutan fiksasi FAA ( Formaldehyde  Acetic-Acid  Alcohol ).    Selama proses  fiksasi,  2  jam  pertama  dilakukan  aspirasi dengan menggunakan alat aspirator.
Selanjutnya,  dilakukan  penggantian  larutan fiksasi lama dengan yang baru, hingga kemudian sampel terendam selama 24 jam. 4. Dehidrasi
Dehidrasi  dilakukan  dengan  merendam sampel  ke  dalam  larutan  seri      Alkohol  :  TBA. Perendaman  dilakukan  secara  berurutan  yaitu  di dalam  alkohol  50%  sebanyak  dua  tahap,  larutan Johansen  I,  II,  III,  IV,  dan  V,  masing-masing selama 5 jam.  Setelah perendaman dalam larutan Johansen V selesai, penggantian larutan dilakukan  kembali  dengan  cara  menuangkan TBA  murni  sebanyak  tiga  tahap.    Dua  tahap pertama dilakukan masing-masing selama 5 jam, sementara tahap ketiga dilakukan selama 12 jam. Selanjutnya,  setelah  perendaman  dalam  TBA murni  selesai,  penggantian  larutan  dilakukan kembali  dengan  cara  menuangkan  secara berurutan  TBA  :  Minyak  Parafin  selama  5  jam, dan       ¼ (TBA : Minyak Parafin) + ¾ Parafin 48 0 C selama 3 jam.
5. Infiltrasi
Infiltrasi  dilakukan  dengan  merendam sampel  secara  berurutan  ke  dalam  parafin  48 0 C dan  parafin  58 0 C,  masing-masing  sebanyak  2 kali  selama  6  jam,  di  dalam  oven.    Setelah selesai, dapat segera dilakukan proses penanaman ( embedding ).
6. Embedding
Proses embedding dilakukan  dengan  cara menuangkan parafin 58 0 C yang berisi sampel ke
dalam kotak parafin.  Penambahan parafin 58 0 C pun  dapat  dilakukan  untuk  menyempurnakan terbentuknya  balok  parafin.    Balok  parafin  yang telah  terbentuk  dan  mengandung  sampel, kemudian  dapat  dikeluarkan  dari  kotak  parafin dan  proses  penyayatan  pun  dapat  segera dilakukan.
7. Penyayatan
Penyayatan dilakukan dengan menggunakan  mikrotom  putar.    Penyayatan dilakukan  dengan  ketebalan  15--37  µ  hingga terbentuk  pita-pita  sayatan.    Adapun  posisi penyayatan  sampel  dilakukan  dengan  dua  cara. Dari  10  sampel  yang  tersedia,  5  sampel  disayat secara  melintang  ( cross  section )  dan  5  sampel yang  lain  disayat  secara  memanjang  ( long section ).
8. Penempelan
Penempelan dilakukan dengan cara menempelkan  pita  sayatan  di  atas  permukaan gelas  objek  yang  sebelumnya  telah  diolesi albumin  dan  akuades.    Selanjutnya,  gelas  objek tersebut  dipanaskan  di  atas parafin  stretching hingga pita sayatan menempel sempurna.
9. Pewarnaan
Pewarnaan dilakukan
dengan menggunakan larutan pewarna seri Safranin- Fast Green dari  Sass  (1958)  yang  telah  dimodifikasi (Sass,  1958).    Setelah  pita  sayatan  menempel sempurna  di  atas  permukaan  kaca  objek, selanjutnya secara berurutan kaca objek direndam dalam xilol, alkohol 100%; 95%; 70%; 50%,  dan  30%,  masing-masing  selama  5  menit. Setelah  itu,  kaca  objek  direndam  dalam  larutan safranin  dalam  akuades  1%  selama  ±1  jam. Kemudian, kaca objek dibilas dengan air hingga tidak  berwarna.    Selanjutnya,  secara  berurutan
kaca  objek  direndam  dalam  alkohol  30%;  50%; 70%;  95%,  masing-masing  selama  5  menit. Setelah  itu,  kaca  objek  direndam  dalam  larutan 0,1% fast  green dalam  alkohol  95  %  selama  ±1 menit.    Kemudian,  kaca  objek  direndam  dalam alkohol  100%  sebanyak  2  kali,  masing-masing selama  5  menit,  lalu  direndam  dalam  xilol sebanyak 2 kali, masing-masing selama 5 menit. Selanjutnya,  sayatan  pada  kaca  objek  ditetesi entelan dan ditutup dengan kaca penutup. 10. Pengamatan mikroskopis Pengamatan mikroskopis dilakukan dengan  mengamati  susunan prophylls pada sayatan  melintang  ( cross  section ),  serta  letak pembentukan mata tunas pada sayatan memanjang  ( long  section ) kuncup  nodus ranting G.  apus .    Pengamatan  dilakukan  di  bawah mikroskop cahaya dan dilakukan pemotretan. 11. Analisis data
Analisis data dilakukan dengan membandingkan antara data pengamatan dengan hasil  penelitian  Usui  (1957b lihat McClure, 1966),  dan  selanjutnya  dibuat  kesimpulan
mengenai  pola  percabangan G.  apus menurut tipe  pola  percabangan  yang  telah  dibuat  oleh Wenyue et al., (1987).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
1. Pengamatan  Sayatan  Melintang  (cross section)  Kuncup  Pada  Nodus  Ketiga Ranting G. apus
Berdasarkan  pengamatan,  dari  5  sampel nodus  ketiga  ranting  yang  digunakan,  hanya  2 sampel  yang  dianggap  representatif  sebagai  data pengamatan.  Dari 2 sampel tersebut, satu sampel menunjukkan jumlah mata tunas sebanyak 1 dan satu sampel yang lain menunjukkan jumlah mata tunas  sebanyak  3.    Sementara  itu,  untuk menunjang  pengamatan  susunan prophylls pada kuncup  yang  memiliki  2  mata  tunas,  perlu dilakukan  pengambilan  data  tambahan.  Data tambahan  tersebut  diperoleh  dengan  terlebih dahulu membuat sediaan segar sayatan melintang kuncup, yang kemudian diamati dengan menggunakan  mikroskop  binokuler.    Hasil pengamatan  sediaan  segar  sayatan  melintang kuncup yang memiliki 2 mata tunas dapat dilihat pada Gambar 1.
Gambar 1. Hasil pengamatan mikroskopis sayatan memanjang ( long section ) (Dokumentasi pribadi)
Keterangan :
A. 1 mata tunas, (1) prophylls, (2) seludang, (3) mata tunas, (4) nodus basal mata tunas B. 2 mata tunas, (1) mata tunas pertama, (2) mata tunas kedua, (3) prophylls ke dua,
(4) prophylls pertama atau nodus basal tunas pertama
Berdasarkan pengamatan sayatan melintang  kuncup  yang  memiliki  1  mata  tunas, terlihat bahwa prophylls memiliki 2 keel .  Selain itu, terlihat pula bahwa prophylls mengelilingi 1 mata  tunas  secara  menyeluruh  (Gambar  1A). Sementara  itu,  berdasarkan  pengamatan  sayatan melintang  kuncup  yang  memiliki  jumlah  2  mata tunas,  terlihat  2 prophylls yang  masing-masing memiliki  2 keel . Prophylls pertama  tampak mengelilingi  mata  tunas  pertama  dan  kedua, sementara prophylls kedua  hanya  mengelilingi mata tunas kedua (Gambar 1B).
Selanjutnya, berdasarkan hasil pengamatan  sayatan  melintang  kuncup  yang memiliki  3  mata  tunas,  terlihat  tiga prophylls dengan susunan prophylls pertama berada dalam lingkaran  paling  luar  dan  tampak  mengelilingi ketiga  mata  tunas.    Sementara  itu, prophylls kedua  dan  ketiga  berada  dalam  lingkaran  yang lebih dalam, dan masing-masing hanya mengelilingi  satu  mata  tunas.    Ketiga prophylls tersebut  memiliki  2 keel dan  menunjukkan  titik ujung ( tip point ) yang jelas (Gambar 2).
Gambar 2. Hasil pengamatan sayatan melintang ( Cross section ) bagian basal kuncup yang memiliki 3 mata tunas (dokumentasi pribadi).
Keterangan :
A. Sayatan melintang kuncup yang memiliki 3 mata tunas, (1) bagian basal mata tunas pertama
B. Mata tunas ke tiga
C. Mata tunas ke dua
2. Sayatan Melintang ( cross section )
Berdasarkan  Usui  ( lihat McClure,  1966) dan  Wenyue et  al., (1987),  maka  tipe  susunan prophylls pada  hasil  pengamatan  nodus  yang memiliki  satu,  dua  dan  tiga  mata  tunas,  secara berurutan  adalah  terlihat  sama  seperti  susunan prophylls pada  bambu  dengan  pola  percabangan tunggal ( single branching ) (Gambar 3 A), ganda ( double  branching )  (Gambar  3  B),  dan
percabangan banyak ( multiple branching ) (Gambar  3  D).    Namun,  belum  diketahui  secara pasti mengenai asal pembentukan tiap mata tunas pada  nodus,  serta  belum  dapat  diketahui mengenai ekspresi tiap mata tunas tersebut dalam melanjutkan  pertumbuhannya  di  alam,  membuat penetapan  tipe branch  complement dan  pola percabangan  belum  dapat  dilakukan Sayatan Memanjang (long section).
Gambar 3. Percabangan G. apus di alam (dokumentasi pribadi)
Keterangan :
(A) Percabangan tunggal (B) Percabangan ganda (C) Percabangan tiga (D) Percabangan banyak
Pengetahuan  terhadap  asal  pembentukan branch  complement untuk  menentukan  pola percabangan  ranting G.  apus di  alam,  ternyata belum dapat diperoleh sepenuhnya apabila hanya didasari pada hasil pengamatan sayatan melintang  ( cross  section )  nodus  ranting.    Oleh karena itu, perlu dilakukan pengamatan terhadap hasil sediaan histologis sayatan memanjang ( long section ).
Berdasarkan pengamatan sayatan memanjang  kuncup  yang  memiliki  jumlah  1 mata  tunas,  terlihat  bahwa  pada  bagian  basal mata  tunas,  terdapat prophylls yang  melingkari mata  tunas  tersebut.    Letak  kemunculan prophylls pertama dianggap sebagai bagian basal dari  mata  tunas.    Hal  tersebut  menunjukkan adanya peran prophylls sebagai struktur pelindung mata tunas (Esau, 1965).  Lebih lanjut, menurut  Wong  (1995b), prophylls merupakan organ  daun  pertama  dari  tunas  aksilar,  dan karena  karakteristik  struktur  serta  posisinya, maka prophylls sangat  bagus  digunakan  sebagai penanda  asal  percabangan.    Oleh  karena  itu,
dapat  diketahui  bahwa  mata  tunas  tersebut terbentuk  dari  daerah  aksil  dan  dapat  disebut sebagai tunas aksilar.
Diketahuinya prophylls sebagai  struktur penanda asal percabangan yang terletak di bagian basal  mata  tunas,  dapat  membantu  pemahaman terhadap asal pembentukan tiap mata tunas pada nodus.    Hal  tersebut  ditunjukkan  pada  hasil pengamatan  sayatan  memanjang  kuncup  yang memiliki  2  mata  tunas.    Diketahui  bahwa  mata tunas  kedua  terbentuk  pada  posisi  yang  dekat dengan prophylls pertama.    Hal  tersebut memperlihatkan  bahwa  mata  tunas  kedua terbentuk dari bagian basal tunas pertama.
Sementara  itu,  berdasarkan  pengamatan terhadap  hasil sediaan histologis  sayatan memanjang,  tidak  diperoleh  kuncup  yang memiliki  jumlah  3  mata  tunas.    Namun,  hal tersebut tidak menjadi kendala dalam pembuktian  bahwa  tunas  kedua  dan  ketiga memang  benar  berasal  dari  bagian  basal  tunas pertama.  Pembuktian tersebut dapat dilihat pada
Keterangan :
A. 1 mata tunas, (1) prophylls , (2) seludang, (3) mata tunas, (4) keel
B. 2 mata tunas, (1) prophylls pertama (2) prophylls kedua, (3) mata tunas pertama, (4) mata tunas kedua
Gambar 5. Hasil pengamatan mikroskopis sayatan melintang kuncup yang memiliki 3 mata tunas dari G. Apus (Dokumentasi pribadi)
hasil  sayatan  melintang  ( cross  section )  kuncup yang memiliki jumlah 3 mata tunas (Gambar 5). Adapun penyayatan tersebut dilakukan agak jauh dari  pucuk  mata  tunas  pertama,  atau  tepatnya berada  di  bagian  basal  mata  tunas  pertama. Berdasarkan  pengamatan,  terlihat  perbedaan susunan prophylls antara  mata  tunas  kedua dengan  mata  tunas  ketiga.    Hal  tersebut ditunjukkan  dari  susunan prophylls mata  tunas kedua  yang  terlihat  lebih  jelas  dibandingkan susunan prophylls mata tunas ketiga.
Lebih  lanjut,  berdasarkan  pengamatan sayatan  melintang  ( cross  section )  dari G.  apus , kejelasan susunan prophylls menunjukkan bahwa penyayatan tepat dilakukan di pucuk mata tunas. Dengan  demikian,  perbedaan  kejelasan  susunan prophylls antara  mata  tunas  kedua  dengan  mata tunas  ketiga,  menunjukkan  bahwa  pembentukan kedua  mata  tunas  tersebut  tidak  berasal  dari posisi  yang  sama  pada  nodus  basal  tunas pertama.
Selanjutnya, berdasarkan hasil pengamatan  terhadap  asal  pembentukan  mata tunas  tersebut,  dapat  disimpulkan  bahwa  tunas- tunas  yang  tumbuh  pada  tiap  nodus  ranting G. apus adalah  berasal  dari  1  tunas  pertama.    Pada nodus  yang  memiliki  3  mata  tunas,  mata  tunas pertama  tampak  berukuran  besar  dan  terletak  di antara mata tunas kedua dan ketiga.   Mata tunas pertama kemudian dikenal sebagai tunas primer, sedangkan  mata  tunas  kedua  dan  ketiga  dikenal sebagai tunas sekunder.  Menurut Wong (1995a), tunas  primer  bersifat  dominan,  sedangkan  tunas sekunder bersifat subdominan.

## KESIMPULAN
Berkaitan  dengan  asal  pembentukan tunas  sekunder  pada  tunas  primer  tersebut, berdasarkan McClure ( lihat Wong 1995b), maka asal  pembentukan branch  complement pada ranting G.  apus adalah  berasal  dari  satu  tunas primer yang bersifat dominan, yang pada bagian nodus  basalnya  mampu  membentuk  tunas-tunas sekunder  yang  bersifat  subdominan.    Lebih
Keterangan :
1. Prophylls pertama 2. Mata tunas pertama 3. Prophylls ke dua 4. Mata tunas ke dua 5. Prophylls ke tiga 6. Mata tunas ke tiga 7. Tip point
lanjut,  tipe  pembentukan branch  complement tersebut  dikenal  dengan  tipe unrestricted monoclade .    Sementara  itu,  berdasarkan  asal pembentukan branch complement tersebut,  serta kategori  pola  percabangan  yang  dibuat  Wenyue et  al., .  (1987),  maka  dapat  disimpulkan  bahwa pola percabangan ranting G. apus di alam adalah pola percabangan tunggal ( single branching ).
Selanjutnya,  dapat  disimpulkan  bahwa sistem  percabangan  pada G.  apus adalah  sama seperti sistem percabangan pada bambu
monopodial, yaitu bersifat monophyletic .  Sistem percabangan tersebut ditandai dengan terbentuknya  tunas  sekunder  pada  nodus  basal tunas  primer.    Letak  internodus  bagian  basal yang  sangat  berdekatan  antara  tunas  primer dengan  tunas  sekunder,  membuat  tunas-tunas tersebut tampak terbentuk secara bersamaan pada dasar  yang  sama  dari  nodus.    Hal  tersebut kemudian  membuat  tiap  nodus  bambu  di  alam tampak  memunculkan  banyak  tunas  (Wenyue et al., 1987).

## DAFTAR PUSTAKA
Agung, IGAMS and Y. Hardini. 2002. Species of bamboo  in  Bali: Gigantochloa  apus (Schult.
& Schult.) Kurz and Gigantochloa atroviolacea Widjaja. Jurnal  Biologi, 6(2): 52--55.
Aziz,  SA.  1997.  Cara  penanaman  setek  buluh bambu betung, andong, temen, hitam dan tali. Buletin Agronomi , 25(2): 15--22.
Banik,  RL.  1995.  A  manual  for  vegetative propagation of bamboos. INBAR, New Delhi: 66 hlm.
Bystriakova,  N.,  V.  Kapos,  C.  Stapleton,  and  I.
Lysenko. 2003. Bamboo biodiversity Information  for  planning  conservation  and management  in  the  Asia-Pacific  region. UNEP-WCMC/INBAR A Banson Production, UK: 72 hal
Dransfield,  S  and  EA.  Widjaja  (eds.).  1995. Plant  resources  of  South-East  Asia  No.  7: Bamboos . PROSEA, Bogor: 189 hlm. Esau,  K.  1965.  Plant  anatomy.  John  Wiley  & Sons., New York: xx + 767 hlm.
Lembaga  Biologi  Nasional  –  LIPI.  1980.
Beberapa jenis bambu. Balai Pustaka, Jakarta:
96 hlm.
McClure,  FA.  1966.  The  bamboos  a  fresh perspective. Harvard University Press, Massachusetts: xv + 347 hlm.
Mohmod, AL. and W. Liese. 1995. Utilization of bamboos.  Dalam:  Othman,  A.R.,  A.L.
Mohmod, W. Liese & N. Haron (eds.). 1995. Planting  and  utilization  of  bamboo  in Peninsular  Malaysia.    Forest  Research
Institute Malaysia (FRIM), Research Pamphlet No. 118, Kuala Lumpur: 50--75.
Othman,  AR  and  N.  Haron.  1995.  Planting  of bamboos.  Dalam:  Othman,  A.R.,  A.L. Mohmod, W. Liese & N. Haron (eds.). 1995. Planting  and  utilization  of  bamboo  in Peninsular  Malaysia.    Forest  Research
Institute Malaysia (FRIM), Research Pamphlet No. 118, Kuala Lumpur: 19--37.
Prasetyaningtyas,  SW. 2005.  Pertumbuhan tunas aksilar  nodus  kedua  dan  ketiga  dari  anak ranting bambu apus ( Gigantochloa apus (J.A.
&  J.H.  Schultes)  Kurz).  Skripsi  Sarjana. Departemen  Biologi,  Fakultas  Matematika dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam,  Universitas Indonesia, Depok: viii + 60 hlm.
Prihatini,  R.  2004.  Pengaruh  posisi  penanaman eksplan  terhadap  pertumbuhan  tunas  aksilar bambu apus ( Gigantochloa apus (J.A. & J.H. Schultes) Kurz). Skripsi Sarjana. Departemen Biologi,  Fakultas  Matematika  dan  Ilmu Pengetahuan  Alam,  Universitas  Indonesia, Depok: ix + 62 hlm.
Purbaningsih,  S.,  LRF.  Kusmadji  and  Y.  Yusuf. 2002. Kultur in vitro bambu apus ( Gigantochloa apus Kurz): Induksi tunas dan pengakaran. Laporan Penelitian Riset
Unggulan Universitas Indonesia tahun anggaran  2001.  Fakultas  Matematika  dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Indonesia, Depok: x + 38 hlm.
Rahayu, EMD. 2003. Pengaruh Kinetin dan BAP terhadap  pertumbuhan  tunas  aksilar  bambu apus  ( Gigantochloa  apus (J.A.  &  J.  H.
Schultes) Kurz). Skripsi Sarjana. Departemen
Biologi,  Fakultas  Matematika  dan  Ilmu Pengetahuan  Alam,  Universitas  Indonesia, Depok: viii + 67 hlm.
Sass,  JE.  1958.  Botanical  Microtechnique.  The lowa  State  University  Press,  Lowa:  xi  +  228 hlm.
Subramanian,  KN.  1995.  Genetic  improvement and conservation of bamboos in India. Dalam: Rao,  VR.  &  AN.  Rao  (eds.).  1995.  Bamboo and  rattan:  genetic  resources  and  use. Proceedings of the First INBAR Biodiversity, Genetic Resources and Conservation Working Group,  Singapore,  November  7--9,  1994. New Delhi: 23--27.
Usui,  H.1987.  Morphological  studies  on  the prophylls  and  their  systematic  significance . Dalam:  Rao,  A.N.,  G.  Dhanarajan  &  C.B. Sastry  (eds.).  1987.  Recent  research  on bamboos.    Proceedings  of  the  International Bamboo Workshop, Hangzhou, October 6--4, 1985. People’s Republic of China, Hangzhou: 185--191.
Wardah,  R.  2005.  Pertumbuhan  tunas  aksilar nodus  kedua  dan  ketiga  dari  ranting  bambu apus  ( Gigantochloa  apus (J.A.  &  J.H. Schultes) Kurz). Skripsi Sarjana. Departemen Biologi,  Fakultas  Matematika  dan  Ilmu Pengetahuan  Alam,  Universitas  Indonesia,
Depok: xi + 57 hlm.
Wenyue,  H.,  D.  Zhufu,  L.  Youfen  and  L.
Ping.1987.  Studies  on  branching  pattern  of monopodial  bamboos .  Dalam :  Rao,  A.N.,  G.
Dhanarajan  &  C.B.  Sastry  (eds.).  1987. Recent research on bamboos.  Proceedings of the International Bamboo Workshop, Hangzhou,  October  6--4,  1985.  People’s Republic of China, Hangzhou: 128--135.
Wong,  KM.  1995a.  The  bamboos  of  peninsular Malaysia. Malayan Forest Records, No. 41. Wong,  KM.  1995b.  The  morphology,  anatomy, biology  and  classification  of  peninsular Malaysian  bamboos.  University  of  Malaya,
Kuala Lumpur: viii + 189 hlm.