## IDENTIFIKASI MOLEKULER VIRUS PENYEBAB MOSAIK PADA SEMBILAN VARIETAS TEBU

## MOLECULAR IDENTIFICATION OF MOSAIC-CAUSING VIRUS IN NINE SUGARCANE VARIETIES
Dewi Rahmitasari 1) * , Susamto Somowiyarjo 2) , & Sedyo Hartono 2)
1) Balai Besar Perbenihan dan Proteksi Tanaman Perkebunan (BBPPTP) Surabaya Jln. Raya Mojoagung No. 52, Mojoagung, Jombang, Jawa Timur 61482
2) Departemen Hama dan Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian, Universitas Gadjah Mada Jln. Flora 1, Bulaksumur, Sleman, Yogyakarta 55281
*Penulis untuk korespondensi: Email: d.rahmitasari@gmail.com

## ABSTRACT
Sugarcane ( Saccharum officinarum L.) is very important commodity in Indonesia because of its economical value as a sugar producing plant. One of the disease in sugarcane cultivation which have to be treated is mosaic symptoms because of its potency in reducing sugar yield. Mosaic symptoms might be caused by some viruses, therefore virus identification is required to find the virus that has caused the sugarcane disease in all of sugarcane field which can be found in East Java as working area of Seeding and Protection Center for Estate Crops Surabaya. This laboratory had an authority to certify the shoot to be distributed. This research aimed to find out the virus that caused the mosaic symptoms from nine sugarcane varieties and to obtain information about the most suitable identification method for shoot health test in Seeding and Protection Center for Estate Crops Surabaya. The first method of this research were the sugarcane leaf with mosaic sampling from nine varieties: VMC 7616, PSJK 922, Kidang Kencana, and Tolangohula 2 (Jombang); PS 881 and PS 862 (Pasuruan); Bululawang, PS 864, dan PSBM 901 (Kediri). The next experiments were conducted in the Laboratory of Phytopathology, Faculty of Agriculture, Universitas Gadjah Mada. RNA was isolated from the sample and continued with RT-PCR technique, sequencing and bioinformatic analysis. Primers which was used in this research were MJ1-MJ2 and SCSMV cpF – SCSMV AP3. The result showed that mosaic symptoms of eight sugarcane varieties was caused by two species of virus: SCMV ( Sugarcane mosaic virus ) found in PS 881 and SCSMV ( Sugarcane streak mosaic virus ) found in seven another varieties. Sequencing analysis showed that SCMV isolate found in PS 881 was known to have a high nucleotide homology (93.6%) and related to the isolate from Kenya (KT630805.1), while the SCSMV had a high homology (96.9%−98.5%) and related to SCSMV isolate from Indonesia (AB563503.1) and Pakistan (GQ388116.1).
Keywords: Potyvirus , SCMV, SCSMV, sugarcane virus

## INTISARI
Tebu ( Saccharum officinarum L.) merupakan tanaman penting di Indonesia. Salah satu penyakit yang perlu diwaspadai pada tanaman tebu adalah penyakit mosaik karena potensinya dalam menurunkan produktivitas tebu sehingga perlu dilakukan identifikasi virus penyebab mosaik pada tanaman tebu. BBPPTP Surabaya sebagai instansi yang melaksanakan sertifikasi pada bibit tebu perlu mengetahui metode identifikasi virus penyebab mosaik sebagai dasar dalam pengujian kesehatan benih untuk mendukung tersedianya bibit tebu yang sehat. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui virus penyebab mosaik pada sembilan varietas tanaman tebu dan mengetahui metode identifikasi virus pada tanaman yang cepat dan akurat untuk pengujian kesehatan benih. Penelitian dilakukan di Laboratorium Fitopatologi, Fakultas Pertanian Universitas Gadjah Mada. Penelitian dilakukan dengan mengambil sampel daun tanaman tebu pada sembilan varietas yang diambil dari tiga lokasi berbeda yaitu VMC 7616, PSJK 922, Kidang Kencana, dan Tolangohula 2 (Jombang); PS 881 dan PS 862 (Pasuruan); Bululawang, PS 864, dan PSBM 901 (Kediri). Sampel diisolasi ss-RNA dilanjutkan dengan teknik RT-PCR (Reverse-Transcription Polymerase Chain Reaction), sekuensing dan analisis bioinformatika. Primer yang digunakan dalam penelitian ada dua yaitu MJ1-MJ2 untuk target sekuen dari SCMV dan SCSMV cpF-SCSMV AP3 untuk target sekuen dari SCSMV. Hasil penelitian ditemukan bahwa gejala mosaik yang ditimbulkan pada 8 (delapan) sampel varietas tebu disebabkan oleh 2 (dua) jenis virus penyebab mosaik yaitu SCMV (Sugarcane mosaic virus) yang ditemukan pada varietas PS 881 dan SCSMV (Sugarcane streak mosaic virus) yang ditemukan pada 7 (tujuh) varietas lain. Analisis sekuensing menunjukkan bahwa SCMV yang ditemukan pada varietas PS 881 memiliki homologi nukleotida (93,6%) dan kekerabatan terdekat dengan isolat di Kenya (KT630805.1). SCSMV hasil penelitian ini dikatakan mempunyai homologi (96,9%−98,5%) dan kekerabatan tertinggi dengan isolat SCSMV asal Indonesia (AB563503.1) dan Pakistan (GQ388116.1).
Kata kunci: Potyvirus , SCMV, SCSMV, virus tebu
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia, Vol. 20, No. 2, 2016: 65–71
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia                                                                Vol. 20 No. 2 66

## PENGANTAR
Salah satu penyakit sistemik yang tersebar luas pada tanaman tebu adalah penyakit mosaik. Handojo et al (1978) menyebutkan bahwa apabila persentase infeksi pada tebu POJ 3016 lebih dari 50%, virus mosaik  strain  Kebonagung  dapat  menimbulkan kerugian  secara  nyata  yaitu  terjadi  penurunan produksi gula sebesar 10−22%. Identifikasi virus penyebab mosaik pada tanaman tebu perlu dilakukan sebagai sarana pendukung upaya penyediaan benih sehat yang terbebas dari virus penyebab mosaik. Damayanti dan Putra (2011) melaporkan sebanyak 59 perkebunan tebu di Jawa Tengah dan Jawa Timur - Indonesia telah terserang Sugarcane streak mosaic virus (SCSMV) sehingga dengan adanya pengujian kesehatan benih yang akan diedarkan BBPPTP Surabaya, diharapkan dapat mencegah persebarannya.
BBPPTP (Balai Besar Perbenihan dan Proteksi Tanaman Perkebunan) Surabaya mempunyai andil dalam penyediaan benih tebu yang bermutu dan bebas penyakit. Melalui Pengawas Benih Tanaman (PBT) yang dimiliki, BBPPTP Surabaya melakukan pengujian mutu standar benih yang meliputi Pengujian Kadar Air, Kemurnian Fisik, dan Daya Kecambah. Menurut Peraturan Menteri PAN Nomor 09 Tahun 2012 pengujian kesehatan benih menjadi tugas dari PBT di BBPPTP Surabaya untuk memastikan bahwa benih-benih yang diedarkan oleh produsen benih terbebas dari penyakit terbawa benih.
Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui secara molekuler virus penyebab mosaik pada sembilan varietas tanaman tebu dan hubungan kekerabatan- nya dengan isolat lain di dunia serta mengetahui metode deteksi virus yang cepat dan tepat untuk pengujian  kesehatan  benih  oleh  PBT  di  wilayah kerja BBPPTP Surabaya.

## BAHAN DAN METODE

## Pengambilan Sampel
Sampel berupa daun tanaman tebu yang terserang virus mosaik yang diperoleh dari Pasuruan (varietas PS 881, PS 862), Jombang (varietas VMC 76-16, Tolangohula 2, Kidang Kencana, PSJK 922) dan Kediri (varietas Bululawang, PS 864, PSBM 901).
Isolasi RNA Virus Tanaman Tebu Bergejala Mosaik Isolasi RNA dilakukan dari 0,1 g sampel daun sakit  menggunakan  kit  komersial  RNeasy  Plant Mini Kit (Qiagen, USA). Prosedur isolasi mengikuti panduan dari produsen kit. RNA yang diperoleh disimpan pada suhu -20°C.
Identifikasi  Molekuler Potyvirus dan  SCSMV dengan metode RT-PCR Digunakan  dua  macam  primer  yang  mampu mengamplifikasi gen pengkode coat protein Potyvirus dan  SCSMV.  Deteksi  anggota  genus Potyvirus digunakan primer umum yang didesain oleh Marie- Jeanne et al. (2000) yaitu MJ1 dan MJ2 dengan urutan basa 5’-ATGGTHTGGTGYATHGARAAY GG-3’ (MJ1) dan 5’-TGCTGCKGCYTTCATYTG-3’ (MJ2). Untuk deteksi SCSMV digunakan primer SCSMV cpF (Damayanti & Putra, 2011) dan SCSMV AP3 (Hema et al ., 2003) yang didesain untuk meng- amplifikasi sebagian fragmen dari coat protein (CP) dan ujung 3’ gen. Urutan basa kedua primer tersebut adalah 5’-GTGGGTTCAGTTCTCGGTTC-3’ (SCSMV cpF) dan 5’-TTTTTTCCTCCTCACGGGGCAGG TTGATTG-3’ (SCSMV AP3). RNA total selanjutnya disintesis menjadi cDNA dengan menggunakan RT- PCR kit RevertAid First Strand cDNA Synthesis (Thermo Scientific, Waltham, MA USA) mengikuti protokol dari produsen kit tersebut. RT-PCR dilaku- kan pada mesin PCR dengan program inkubasi pada suhu 65 o selama 5 menit dilanjutkan suhu 42 o C selama 60 menit dan 70 o C selama 5 menit. Sediaan cDNA selanjutnya digunakan pada proses PCR untuk menggandakan sekuen DNA virus yang menjadi target dengan menggunakan primer (IDT, Singapore) dan kit PCR Biotaq™ Taq Polymerase (Bioline, UK) dengan komposisi reagen sesuai dengan rekomendasi pembuat enzim Taq Polymerase (Bioline, UK). Siklus PCR yang dilakukan adalah pre-denaturasi pada suhu 94ºC selama 2 menit, denaturasi pada suhu 94ºC selama 30 detik, penempelan primer pada suhu 55ºC  selama  30  detik,  ekstensi  pada  suhu  72ºC selama 1 menit dan ekstensi akhir pada suhu 72º C selama 5 menit.
DNA hasil amplifikasi dielektroforesis pada gel agarosa 1.5% yang dilarutkan dalam 1 x Tris-boric EDTA (TBE) pada tegangan 100 Volt selama 25 menit. Gel agarosa kemudian direndam pada larutan etidium bromida (EtBr) selama 15 menit, divisualisasi dengan UV transiluminator dan didokumentasikan dengan kamera digital. Sampel dengan hasil positif dikirim ke First Base Malaysia melalui PT. Genetika Science Jakarta untuk dilakukan perunutan nukleotida. Hasil perunutan dianalisis bioinformatika mengguna- kan software BioEdit dan Mega5.2.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Pengambilan Sampel
Secara visual, sembilan sampel yang dikoleksi menunjukkan gejala mosaik dengan pola yang sama yaitu berupa garis memanjang pada bidang daun
tebu yang membentuk area klorotik dan akan lebih terlihat dengan jelas apabila diterawang pada cahaya (Gambar 1). Hal ini sesuai dengan penjelasan dari Kokie dan Gillaspie (1989) bahwa gejala umum dari mosaik adalah pola memanjang searah daun yang membentuk warna hijau pucat atau bahkan kuning dan kontras dengan latar belakang warna hijau daun normal. Setelah inokulasi virus akan tersebar ke seluruh bagian tanaman, akan tetapi gejala mosaik yang ditimbulkan hanya akan muncul pada daun  muda dan daun yang sedang berkembang ketika terjadinya infeksi.
Pengamatan gejala dapat digunakan untuk men- deteksi terjadinya  penyakit  pada  tanaman.  Akan tetapi  pengamatan  melalui  gejala  memiliki  keter- batasan ketika gejala yang sama disebabkan oleh lebih dari satu mikroorganisme sehingga kita tidak dapat mengetahui secara pasti jenis mikroorganisme
penyebab  penyakit.  Oleh  karena  itu,  dibutuhkan metode  lain  yang  lebih  akurat  dan  cepat  dalam identifikasi penyebab penyakit pada tanaman.
Identifikasi Virus Penyebab Mosaik secara Molekuler Potyvirus . PCR dengan menggunakan primer MJ1 dan MJ2 menunjukkan hasil positif hanya pada sampel nomor 1 yaitu varietas PS 881 yang menunjuk- kan pita dengan ukuran 327 bp pada pengamatan dibawah UV transluminator (Gambar 2). Pasangan primer pada deteksi Potyvirus dipilih karena meng- amplifikasi fragmen pendek DNA target sehingga akan memberikan kemungkinan amplifikasi yang tinggi pada pengujian pendahuluan (Grisoni et al., 2006). Menurut Ha et al. (2007) penggunaan primer umum selain akan mempercepat proses deteksi juga memungkinkan untuk perunutan nukleotida sebagian genom untuk tujuan taksonomi.
Gambar 1. Gejala mosaik pada tanaman tebu: varietas PS 881 (A), varietas VMC 7616 (B), varietas PSJK 922 (C), varietas PS 862 (D), varietas PS 864 (E), varietas Bululawang (F), varietas Tolangohula 2 (G), Kidang Kencana (H), varietas PSBM 901 (I)
A B C D I H G F E
Gambar 2. Hasil elektroforesis yang diperoleh dari proses PCR menggunakan primer MJ1 dan MJ2, diamati melalui UV transiluminator: penanda 100 bp (M), varietas PS 881 (1), varietas VMC 7616 (2), varietas PSJK 922 (3), varietas PS 862 (4), varietas PS 864 (5), varietas Bululawang (6), varietas Tolangohula 2 (7), Kidang Kencana (8), varietas PSBM 901 (9)
Dari hasil analisis homologi diketahui bahwa penyebab  mosaik  pada  sampel  daun  varietas  PS 881yang berasal dari Pasuruan adalah SCMV yang selanjutnya  disebut  dengan  isolat  SCMV-Jatim. Isolat SCMV-Jatim (PS 881) memiliki persentase kesamaan basa nukleotida paling tinggi dengan isolat SCMV_100  Kenya  (KT630805.1)  yaitu  sebesar 93,6% (Tabel 1). Selanjutnya persentase kesamaan basa nukleotida semakin menurun terhadap isolat SCMV R1 Rwanda (KT44392.1), SCMV2 Kenya (KT630806.1), SCMV_94 Kenya (KT630800.1), dan SCMV_90 Kenya (KT630806.1). Hubungan kekerabatan SCMV-Jatim yang di- temukan pada PS 881 dengan isolat yang ada di Gene Bank dengan analisis filogenetik diketahui isolat SCMV pada PS 881 mempunyai kekerabatan yang paling tinggi dengan isolat SCMV 100 Kenya meskipun memiliki asal keturunan yang berbeda.
Sugarcane  streak  mosaic  virus (SCSMV). Elektroforesis  hasil  PCR  menggunakan  primer SCSMV cpF dan SCSMV AP3 diperoleh hasil reaksi positif pada sampel nomor 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9  dengan pita target sebesar 500 bp. Sementara sampel daun varietas PS 881 dari Pasuruan (nomor 1) dan sampel daun varietas Bululawang dari Kediri (nomor 6) negatif seperti ditunjukkan oleh Gambar 3.
Hal ini dapat diartikan bahwa varietas PS 881 dari Pasuruan hanya terinfeksi Potyvirus saja, sedangkan virus penyebab mosaik pada varietas Bululawang dari Kediri bukan merupakan virus dari genus Potyvirus dan bukan SCSMV. Hasil deteksi ini membuktikan bahwa SCSMV tidak termasuk di dalam genus Potyvirus. Hal ini sesuai dengan informasi dari Adams dan Cartens (2012) yang menyatakan bahwa SCSMV telah di- masukkan ke dalam genus baru yaitu Poacevirus pada tahun 2009. Perbedaan yang dimiliki antara SCSMV  dengan  anggota Potyvirus adalah  pada kurangnya reaktivitas dengan antibodi monoklonal Poty-1 yang bereaksi melawan virus dalam genus Potyvirus (Xu et al. , 2010) dan antiserum poliklonal melawan SCMV, Maize dwarf mosaic virus (MDMV) dan Shorgum mosaic virus (SrMV) (Jenson & Hall, 1993; Hema et al., 2002). P1 protein Potyvirus dan Rymovirus menjadi salah satu perbedaan dengan protein P1 pada Tritimovirus dan Poacevirus pada kelompok filogeni (Rodamilans, Valli & Garcia, 2013 cit. Revers & Garcia, 2015). Berdasarkan data pada International Committee on Taxonomy of Viruses (http://www.ictvonline.org/ virusTaxonomy.asp) dapat diketahui bahwa Poacevirus menjadi anggota genus dari famili Potyviridae sejak
Tabel 1. Persentase kesamaan basa nukleotida pada isolat SCMV PS 881 dan beberapa isolat lain dari luar negeri melalui program BioEdit
SCMV-Jatim  SCMV_100  SCMV R1 SCMV2 SCMV_94 SCMV_90 (PS 881) (Kenya) (Rwanda) (Kenya) (Kenya) (Kenya) SCMV-Jatim (PS 881) ID SCMV_100 (Kenya) 93,6 ID SCMV R1 (Rwanda) 93,3 99,6 ID SCMV2 (Kenya) 93,0 99,3 99,0 ID SCMV_94 (Kenya) 92,7 99,0 98,7 99,0 ID SCMV_90 (Kenya) 92,7 99,0 98,7 99,0 100,0 ID
Gambar 3. Hasil elektroforesis yang diperoleh dari proses PCR menggunakan primer SCSMV CPF dan SCSMV AP3 diamati melalui UV transiluminator: penanda 1 kb (M), varietas PS 881 (1), varietas VMC 7616 (2), varietas PSJK 922 (3), varietas PS 862 (4), varietas PS 864 (5), varietas Bululawang (6), varietas Tolangohula 2 (7), Kidang Kencana (8), varietas PSBM 901 (9)
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia                                                                Vol. 20 No. 2 68
tahun  2009  dan  sejak  tahun  itu  pula Sugarcane streak mosaic virus terdaftar sebagai spesies dalam genus Poacevirus bersama  anggota  spesies  lain yaitu Triticum mosaic virus (Anonim, 2016). Genus –genus pada famili Potyviridae ini telah dibedakan berdasarkan komposisi dan struktur genom, kemiripan sekuens dan organisme vektor yang bertanggung jawab atas transmisi virus dari tanaman ke tanaman (Adams et al ., 2011).
Analisis homologi menggunakan bioedit menunjuk- kan bahwa penyebab mosaik pada sampel nomor 2 (VMC 7616-Jombang), 3 (PSJK 922-Jombang), 4 (Kidang Kencana-Jombang), 5 (Tolangohula 2-Jombang), 7 (PS 862-Pasuruan), 8 (PS 864-Kediri), 9 (PSBM 901-Kediri) adalah Sugarcane streak mosaic virus (SCSMV) yang selanjutnya disebut dengan SCSMV- Jbg1 (VMC 7616), SCSMV-Jbg2 (PSJK 922), SCSMV- Jbg3 (Kidang Kencana), SCSMV-Jbg4 (Tolangohula2), SCSMV-Pas (PS 862), SCSMV-Ked1 (PS 864) dan SCSMV-Ked2 (PSBM 901). Semua isolat SCSMV dalam penelitian ini mempunyai kemiripan yang tinggi dengan isolat SCSMV CP- Indonesia (AB563503.1) seperti ditunjukkan pada Tabel 2. Selain dengan SCSMV CP, kemiripan paling tinggi masing-masing isolat  SCSMV  dari  ketujuh  varietas  tebu  dapat dilihat pada Tabel 3.
Hubungan kekerabatan SCSMV yang ditemukan pada  tujuh  varietas  dalam  penelitian  ini  dengan isolat lain di dunia ditunjukkan pada Gambar 4. Seluruh isolat SCSMV hasil penelitian memiliki asal keturunan yang sama dengan SCSMV CP asal Indonesia,  SCSMV  PAK  asal  Pakistan,  SCSMV IND671 asal India dan memiliki asal keturunan yang berbeda dengan SCSMV-THA-NP3 asal Thailand, SCSMV ID asal China dan SCSMV JP1 asal China. Hasil analisis filogenetik juga memberikan infor- masi bahwa isolat hasil penelitian yang berasal dari lokasi sama memiliki hubungan kekerabatan yang paling dekat (SCSMV Ked1 dengan SCSMV-Ked2; SCSMV-Jbg3  dengan  SCSMV-Jbg4).  Kedekatan kekerabatan pada isolat dengan lokasi yang sama kemungkinan disebabkan karena dalam satu lokasi yang sama, sumber bibit yang digunakan adalah sumber bibit yang sama dan membawa virus. Penularan virus secara vegetatif dari sumber bibit pembawa virus sangat mungkin terjadi baik di dalam satu lokasi atau bahkan pada lokasi yang berjarak jauh karena virus akan terbawa bibit yang diperbanyak secara vegetatif menggunakan alat pemotong. Hal ini  telah  dibuktikan  dalam  penelitian  Putra  dan Damayanti  (2009)  bahwa  seperti  halnya  SCMV, SCSMV dapat ditularkan melalui bibit sakit dan secara  mekanis  melalui  pisau  pemotong.  Penye- baran SCSMV yang sangat cepat di lapang dapat
Tab el 2 . P ers ent ase ke sam aan ba sa n uk leo tid a p ada iso lat SC SM V h asil pe nel itia n in i d an b ebe rap a is ola t la in d ari lua r n ege ri m ela lui pro gra m B ioE dit
VM C 76 16 PS JK 92 2 PS 86 2 PS 86 4 TL H 2 Kid ang Ke nca na PS BM 90 1 SC SM V-C P (IN DO NE SIA ) SC SM V (PA KIS TA N) SC SM V- IN D6 71 (IN DIA ) SC SM V-I D (C HIN A) SC SM V T HA -N P3 (T HA IL AN D)
SC SM V J P1 (C HIN A) VM C 7 61 6 ID PS JK 92 2 95 ,9 ID PS 86 2 97 ,1 96 ,9 ID PS 86 4 96 ,9 95 ,9 96 ,9 ID TL H 2 96 ,7 96 ,5 98 ,1 97 ,1 ID Kid ang K enc ana 96 ,7 96 ,7 98 ,3 96 ,5 99 ,3 ID PS BM 90 1 96 ,9 95 ,9 96 ,5 98 ,7 97 ,7 97 ,1 ID SC SM V-C P (IN DO NE SIA ) 97 ,5 96 ,9 97 ,5 97 ,9 97 ,9 97 ,7 98 ,5 ID SC SM V ( PA KIS TA N) 96 ,7 96 ,3 96 ,9 96 ,9 97 ,7 97 ,5 97 ,5 98 ,1 ID SC SM V-I ND 67 1(I ND IA ) 95 ,9 95 ,9 96 ,1 96 ,1 96 ,5 96 ,3 96 ,7 97 ,3 98 ,7 ID SC SM V-I D ( CH IN A) 93 ,3 92 ,7 93 ,5 93 ,9 93 ,9 93 ,7 94 ,5 94 ,7 95 ,1 94 ,5 ID SC SM V T HA -N P3 (T HA IL AN D) 92 ,3 92 ,1 93 ,3 93 ,3 93 ,7 93 ,5 93 ,5 93 ,7 94 ,9 94 ,3 98 ,3 ID SC SM V J P1 (C HIN A) 92 ,7 92 ,1 93 ,3 93 ,3 93 ,7 93 ,5 93 ,9 94 ,1 94 ,9 94 ,3 99 ,3 98 ,1 ID
kan  asam  nukleat  secara  cepat  dan  tepat  pada penelitian ini dapat digunakan sebagai pilihan dalam pengujian kesehatan benih di BBPPTP Surabaya.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Artikel ini disusun berdasarkan sebagian data dari tesis penulis pertama dalam rangka pencapaian derajat M. Biotech pada Program Studi Bioteknologi, Universitas  Gadjah  Mada.  Ucapan  terima  kasih penulis sampaikan kepada BBPPTP Surabaya yang telah  memberikan  izin  untuk  tugas  belajar  dan BPSDMP  Kementerian  Pertanian  atas  beasiswa yang diberikan.
disebabkan oleh bibit sakit dan penggunaaan pisau potong yang terkontaminasi virus pada saat persiapan tanam dan panen.

## KESIMPULAN
Penyebab gejala mosaik pada delapan varietas tanaman tebu diantaranya adalah SCMV dan SCSMV. Isolat SCMV_Jatim memiliki kekerabatan sangat dekat dengan isolat SCMV asal Kenya (KT630805.1) , sementara  SCSMV  yang  ditemukan  pada  tujuh varietas memiliki hubungan kekerabatan yang dekat dengan SCSMV asal Indonesia (AB563503.1) dan Pakistan (GQ388116.1) . Metode deteksi berdasar-

## Tabel 3. Hasil analisis homologi basa nukleotida
No. Isolat SCSMV penelitian Homologi tertinggi Sampel Penelitian Isolat NCBI 1. SCSMV-Jbg1 SCSMV-Pas -SCSMV CP–Indonesia (AB 563503.1) (VMC 7616) (PS 862) -SCSMV PAK-Pakistan (GQ388116.1) 2. SCSMV-Jbg2 SCSMV-Pas -SCSMV CP–Indonesia (AB563503.1) (PSJK 922) (PS 862) -SCSMV PAK-Pakistan (GQ388116.1) 3. SCSMV-Pas SCSMV-Jbg3 -SCSMV CP–Indonesia (AB563503.1) (PS 862) (Kidang Kencana) -SCSMV PAK-Pakistan (GQ388116.1) 4. SCSMV-Ked1 SCSMV-Ked2 -SCSMV CP–Indonesia (AB563503.1) (PS 864) (PSBM 901) -SCSMV PAK-Pakistan (GQ388116.1) 5. SCSMV-Jbg4 SCSMV-Jbg -SCSMV CP–Indonesia (AB563503.1) (TLH 2) (Kidang Kencana) -SCSMV PAK-Pakistan (GQ388116.1) 6. SCSMV-Jbg3 SCSMV-Jbg4 -SCSMV CP–Indonesia (AB563503.1) (Kidang Kencana) (TLH 2) -SCSMV PAK-Pakistan (GQ388116.1) 7. SCSMV-Ked2 SCSMV-Ked1 -SCSMV CP–Indonesia (AB563503.1) (PSBM 901) (PS 864) -SCSMV PAK-Pakistan (GQ388116.1)
Gambar 4. Hubungan kekerabatan molekuler isolat SCSMV dari hasil penelitian dengan beberapa isolat dari luar negeri menggunakan analisis Construct Neighbour-Joining Tree program MEGA5.2
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia                                                                Vol. 20 No. 2 70

## DAFTAR PUSTAKA
Adams, M.J. & E.B. Cartens. 2012. Rativication Vote on Taxonomic Proposals to the International Committee on Taxonomy of Viruses . Archives of Virology. 157: 1411-1422. Anonim. 2016. Virus Taxonomy . http://www.ictvonline. org/virusTaxonomy.asp, diakses 20/7/16.
Damayanti, T.A. & L.K. Putra. 2011. First Occurrence of  Sugarcane  Streak  Mosaic  Virus  Infecting Sugarcane in Indonesia. Journal of General Plant Pathology . 77: 72–74. Grisoni, M., M. Moles, K. Farreyrol, L. Rassaby, R. Davis,  &  M.  Pearson.  2006.  Identification  of Potyviruses Infecting Vanilla by Direct Sequencing of a Short RT-PCR Amplicon. Plant Pathology 55: 525−529.
Ha, C., S.P.A Coombs, P.A Revill, R.M. Harding, M. Vu, & J.L. Dale. 2007. Design and Application of  Two  Novel  Degenerate  Primer  Pairs  for  the Detection and Complete Genomic Characterization of Potyviruses. Archives of Virology 153: 25−36. Handojo,  H.W.,  Siswojo,  &  L.  Legowo.  1978. Penyakit Mosaik, Kerugian dan Pengujian Resistensi. Majalah Perusahaan Gula 14: 23−30.
Hema, M., P. Sreenivasulu, & H.S. Savithri. 2002. Taxonomic Position of Sugarcane streak mosaic virus in the family Potyviridae. Archive of Virology 148: 1185−1193.
Hema, M, H.S. Savithri, & P. Sreenivasulu. 2003. Comparison of Direct Binding Polymerase Chain Reaction with Recombinant Coat Protein Antibody Based Dot-Blot Immunobinding Assay and Immuno- capture-Reverse  Transcription-Polymerase  Chain Reaction  for  the  Detection  of  Sugarcane  Streak Mosaic Virus Causing Mosaic Disease of Sugarcane in India. Current Science 85: 1774–1777.
Jenson, S.G. & J.S. Hall. 1993. Identification of New Shorgum Infecting Species of Potyvirus from Sugarcane. Phytopathology 83: 884. Koike,  H.  &  J.R.  Gillaspie.  1998.  Mosaic,  p. 310−322. In C. Ricaud, B.T. Egan, & A.G. Gillaspie (eds.), Disease of Sugarcane-Major Disease . Elsevier Science Publisher, Amsterdam.
Kumar, P.L.,A.T. Jones, & F. Waliyar. 2004. Serological and Nucleic Acid Based Methods for the Detection of Plant Viruses, p. 86−88. In P.L. Kumar, A.T. Jones, &  F.  Waliyar  (eds.), Manual. International  Crops Research Institute  for  the  Semi-Arid  Tropics, Patancheru, Andhra Pradesh.
Marie-Jeanne, V., R. Loos, J. Peyre, B. Alliot, P. Signoret. 2000. Differentiation of Poaceae Potyviruses by Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction and Restriction Analysis. Journal of Phytopathology 148: 141−151.
Putra, L.K & T.A. Damayanti. 2009. Penyakit Streak mosaic pada  Tebu  di  Indonesia:  Survei  Lapang, Deteksi Virus, Uji Penularan, Kisaran Inang dan Ketahanan Varietas. Majalah Penelitian Gula 45: 19−35.
Revers, F. & J.A. Garcia. 2015. Molecular Biology of  Potyviruses. Advances  in  Virus  Research 92: 101−199.
Xu,  D.L.,  G.H.  Zhou,  R.  Mock,  &  R.  Li.  2010. Complete Nucleotide Sequence and Taxonomy of Sugarcane Streak Mosaic Virus, Member of a Novel Genus in the Family Potyviridae. Virus Genes 40: 432−439.