## UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI EKSTRAK DAUN KELOR
( Moringa oleifera L.) TERHADAP BAKTERI Escherichia coli DAN

## Staphylococcus aureus
Lusi L.R.H Dima 1) , Fatimawali 1) , Widya Astuty Lolo 1)
1) Program Studi Farmasi FMIPA UNSRAT Manado, 95115

## ABSTRACT
Plants are sources of various types of chemical compounds are efficacious drugs, one of which is an anti-infective. This study aims to determine wheter moringa leaf extract contain antibacterial activity and to find out the minimum inhibitory concentration of moringa leaf extract against E.coli and S.aureus. The  method  used  is  agar  diffusion  method.  As  a  result,  it  is  found  that  the  extract  of  Moringa  leaves (Moringa  oleifera  L.)  have  antibacterial  activity  against  E.coli  and  S.  aureus  at  concentrations  of  5%, 10%, 20%, 40%, and 80% respectively. Minimum Inhibitory Concentration (MIC) obtained were 13 mm against  E.  coli  and  12  mm  against  S.  aureus.  Differences  in  the  concentration  of  Moringa  leaves (Moringa  oleifera  L.)  extract  affect  the  growth  of  the  bacteria  E.  coli  and  S.  aureus,  where  the  higher concentration given, the greater the antibacterial activity of inhibiting the growth of bacteria.
Keywords : Moringa oleifera, antibacterial activity, inhibition zone measurement.

## ABSTRAK
Tumbuhan  merupakan  sumber  berbagai  jenis  senyawa  kimia  yang  berkhasiat  obat  yang  salah satunya ialah sebagai antiinfeksi. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui apakah daun kelor ( Moringa oleifera L.)  memiliki  aktivitas  antibakteri  dan  mengetahui  berapa  kadar  hambat  minimum  dari  ekstrak daun  kelor  terhadap  bakteri Escherichia  coli dan Staphylococcus  aureus .  Metode  yang  digunakanya  itu metode difusi agar. Dari hasil penelitian yang dilakukan diketahui bahwa ekstrak daun kelor mempunyai aktivitas antibakteri terhadap Escherichia coli dan Stapylococcus aureus pada konsentrasi 5%, 10%, 20%, 40%, dan 80 % dan Kadar Hambat minimum (KHM) yang didapat yaitu 13 mm pada bakteri Escherichia coli dan  12  mm  pada  bakteri Stapylococcus  aureus. Perbedaan  konsentrasi  ekstrak  daun  kelor mempengaruhi  penghambatan  pertumbuhan  bakteri Escherichia  coli dan Stapylococcus  aureus ,  dimana semakin  tinggi  konsentrasi  yang  diberikan  maka  semakin  besar  pula aktivitas antibakteri  penghambatan pertumbuhan bakteri.
Kata kunci : tanamankelor ( Moringa oleifera L.), aktivitas antibakteri, pengukuran zona hambat

## PENDAHULUAN
Tumbuhan  merupakan  sumber  berbagai jenis  senyawa  kimia  yang  memiliki  khasiat sebagai obat.Pemanfaatan tumbuhan sebagai obat  merupakan  warisan  nenek  moyang yang  sejak  dahulu  kala  dan  telah  banyak digunakan  dalam  kurun  waktu  yang  cukup lama  hampir  diseluruh  dunia  (Djauhariya dan Hernani, 2004).
Pengembangan  produksi  tanaman  obat semakin  pesat,  dipengaruhi  oleh  kesadaran masyarakat yang meningkat tentang manfaat tanaman obat (Dalimartha, 1999). Masyarakat  semakin  sadar  akan  pentingnya kembali ke alam dengan memanfaatkan obat –  obat  alami.  Hal  ini  disebabkan  karena penggunaan  obat  yang  berasal  dari  bahan alam  memiliki  efek  samping  yang  relatif lebih kecil (Djauhariya dan Hernani, 2004).
Penelitian  tentang  bahan  alam  sendiri sudah  banyak  diteliti  di  Indonesia.Hal  ini terkait  dengan  kandungan  bahan  aktif sebagai  hasil  metabolisme  sekunder  pada tanaman  yang  dapat  memberikan  banyak manfaat  yang  salah  satunya  terdapat  pada tanaman kelor   yang berkhasiat sebagai anti kanker,  anti bakteri,  hipotensif, penghambat aktivitas  bakteri  dan  jamur  (Anwar et  al , 2007).  Hal  ini  terkait  dengan  kandungan kimia  yang  terdapat  didalamnya  yaitukaya akan  vitamin  A  dan  vitamin  C,  senyawa glukosionat dan isotiosinat (Bharali, 2003).Penelitian  sebelumnya  yang  telah dilakukan  Aditya  Nugraha  (2013)  tentang Bioaktivitas  Ekstrak  Daun  Kelor  ( Moringa oleifera ) terhadap Escherichia coli penyebab kolibasilosis  pada  babi  menunjukan  bahwa daun  kelor  mempunyai  aktivitas  antibakteri dalam  menghambat  pertumbuhan  bakteri tersebut.
Penyakit  infeksi  merupakan  keadaan masuknya  mikroorganisme  ke  dalam  tubuh, kemudian berkembangbiak dan menimbulkan penyakit (Dwidjoseputro, 1994).Bakteri Eschericia  coli merupakan bakteri  normal  pada  usus  namun  dalam keadaan  tidak  normal  bersifat  patogen, umumnya menyebabkan diare, infeksi saluran  kemih,  pneumonia,  infeksi  luka terutama di  dalam abdomen dan meningitis. Bakteri Staphylococcus  aureus merupakan bakteri  normal  pada  mulut  dan  saluran pernafasan  tetapi  dalam  keadaan  tidak normal bersifat patogen  menyebabkan infeksi pada kulit (Jawetz et al , 2001).
Berdasarkan  uraian di atas. Peneliti tertarik untuk melakukan penelitian tentang aktivitas antibakteri  ekstrak  Daun  Kelor  ( Moringa oleifera L.)  terhadap  bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus.

## METODOLOGI PENELITIAN
Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian yaitu ialah Erlenmeyer ( Approx ), gelas ukur ( Pyrex ),  gelas  kimia  ( Approx ),  tabung reaksi,  rak  tabung  reaksi,  pipet  tetes, penangas air, blender , ayakan mesh 60, kaca arloji,  timbangan  analitik  ( Kern ),  labu ekstraksi,  batang  pengaduk, stirer ,  cawan petri  ( Normax ), rotary  evaporator ,  jarum ose,  pinset,  inkubator, laminair  air  flow (Biotek) ,  termometer,  pencadang,  autoklaf (ALP), mikropipet ( Ecopipette ),  dan mistar berskala, spriritus.
Bahan  yang  digunakan  dalam  penilitian ialah  Daun  Kelor  ( Moringa  oleifera L. ), bakteri  uji  ( Staphylococcus  aureus ATCC 2592  dan Escherichia  coli ATCC  25922)
yang diperoleh dari
Laboratorium Mikrobiologi  Balai  Besar  POM  Manado, Carboxy  Methyl  Cellulose (CMC),  aquades steril,  etanol  96%  p.a,  tablet  Ciprofloxacin 500 mg, Nutrient Agar (NA), H 2 SO 4 0,36 N, BaCl 2 .2H 2 O  1,175%,  NaCl  0,9%,  kertas saring no.1, kertas label dan aluminium foil .

## Persiapan Sampel
Sampel berupa Daun Kelor dikumpulkan
kemudian dibersihkan dari sisa kotoran,selanjutnya  dicuci  dibawah  air mengalir sampai bersih. Setelah bersih dari pengotor,  daun  kelor  ditiriskan,  lalu dikeringkan  dengan  cara  diangin-anginkan. Setelah  itu,  Sampel  yang  telah  kering dihaluskan dengan blender sampai menjadi serbuk.  Serbuk  yang  dihasilkan  diayak dengan  ayakan  mesh  60,  hingga  diperoleh serbuk  yang  halus  dan  homogen.  Hasilnya dimasukkan kedalam wadah gelas tertutup.

## Pembuatan  Ekstrak
Ekstrak  Daun  Kelordiperoleh  dengan cara  maserasi.  Sebanyak  100  gram  serbuk simplisia  daun  kelor  dimasukkan  ke  dalam erlenmeyer,  kemudian  direndam  dengan larutan  etanol  96%  p.a  sebanyak  500  ml, ditutup dengan aluminium foil dan dibiarkan selama 5 hari sambil sesekali diaduk.Setelah 5  hari,  sampel  yang  direndam  tersebut disaring menggunakan kertas saring menghasilkan  filtrat  1  dan  residu  1.  Residu yang ada kemudian ditambah dengan larutan etanol  96%  p.a  sebanyak  250  ml,  ditutup dengan aluminiumfoil dan  dibiarkan  selama 2 hari sambil sesekali diaduk. Setelah 2 hari, sampel  tersebut  disaring  menggunakan kertas  saring  menghasilkan  filtrat  2  dan residu  2.Filtrat  1  dan  2  dicampur  menjadi satu,  lalu  dievaporasi  menggunakan rotary
evaporator ,  sehingga  diperoleh  ekstrak kental  daun  kelor.  Ekstrak  kental  yang dihasilkan  dimasukkan  kedalam  water  bath diuapkan  hingga  seluruh  pelarut  etanol menguap.  Ekstrak  ditimbang  dan  disimpan dalam  wadah  gelas  tertutup  sebelum digunakan untuk pengujian (Anonim, 1986).

## Sterilisasi Alat
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian aktivitas antibakteri ini disterilkan terlebih  dahulu.  Alat-alat  gelas  dan  media disterilkan  dalam  autoklaf  pada  suhu  121 o C selama  15-20  menit  sedangkan  untuk  jarum ose  dan  pinset  disterilisasikan  dengan  cara dibakar  diatas  api  langsung  menggunakan spritus (Lay dan Hastowo, 1992).

## Pembuatan Larutan Kontrol Negatif
Kontrol  negatif  dibuat  dari  CMC  1% dengan  cara  :  1  gram  serbuk  CMC dilarutkan  dalam  100  ml  aquades  steril. Dikocok sampai larutan homogeny.

## Pembuatan Kontrol Positif
Kontrol  positif  dibuat  dari  sediaan  obat tablet  Ciprofloxacin  500  mkg.  Satu  tablet Ciprofloxacin  digerus,  lalu  ditimbang  dan disetarakan  dengan  500  mg.  Kemudian serbuk Ciprofloxacin 50µg/50µl.

## Pembuatan Larutan Uji
Dibuat larutan uji 5%; 10%; 20%; 40%; dan 80% b/v dengan cara ditimbang 0,05 g; 0,1 g;  0,2  g;  0,4 g;  dan  0,8 g ekstrak etanol daun kelor kemudian masing-masing dilarutkan dalam 1 ml larutan CMC.
Pembuatan Media Pembuatan Agar Miring
Nutrient  Agar (NA)  sebanyak  0,4  gram dilarutkan  dalam  20  ml  aquades  (20  g/1000
ml)  menggunakan  erlenmeyer.  Setelah  itu dihomogenkan dengan stirer diatas penangas  air  sampai  mendidih.  Sebanyak  5 ml dituangkan masing-masing pada 2 tabung reaksi  steril  dan  ditutup  dengan aluminium foil .  Media  tersebut  disterilkan  dalam outoklaf  pada  suhu  121 o C  selama  15  menit, kemudian  dibiarkan  pada  suhu  ruangan selama  ±  30  menit  sampai  media  memadat pada  kemiringan  30 o .  Media  Agar  miring digunakan  untuk  inokulasi  bakteri  (Lay, 1994).

## Media Dasar
Nutrient  Agar (NA)  sebanyak  4  gram dilarutkan dalam 200 ml aquades (20g/1000 ml)  menggunakan  erlenmeyer.Setelah  itu, dihomogenkan dengan stirer di atas penangas  air  sampai  mendidih.  Media  yang sudah  dihomogenkan  ini  disterilkan  dalam autoklaf  pada  suhu  121 0 C  selama  15  menit, kemudian  didinginkan  sampai  suhu  ±  45- 50 0 C.Media dasar digunakan dalam pembuatan  media  pengujian  sebagai  lapisan dasar (Lay, 1994).
Media Pembenihan
Nutrient  Agar (NA)  sebanyak  5  gram dilarutkan dalam 250 ml aquades (20g/1000 ml)  menggunakan  erlenmeyer.  Setelah  itu, dihomogenkan dengan stirer di atas penangas  air  sampai  mendidih.  Media  yang sudah  homogen  ini  disterilkan  dalam autoklaf  pada  suhu  121 0 C  selama  15  menit, kemudian  didinginkan  sampai  suhu  ±  45- 50 0 C.Media  pembenihan  digunakan  dalam pembuatan  media  pengujian  sebagai  lapisan kedua (Lay, 1994).
Inokulasi  Bakteri  pada  Media  Agar Miring
Bakteri  uji  diambil  dengan  jarum  ose steril,  lalu  ditanamkan  pada  media  agar miring  dengan  cara  menggores.  Selanjutnya diinkubasi  dalam  inkubator  pada  suhu  37 0 C selama  24  jam.  Perlakuan  yang  sama dilakukan pada setiap jenis bakteri uji.
Pembuatan  Standar  Kekeruhan  Larutan (Larutan Mc. Farland)
Larutan H 2 SO 4 0,36 N sebanyak 99,5 ml dicampurkan  dengan  larutan  BaCl 2 .2H 2 O 1,175% sebanyak 0,5 ml dalam erlenmeyer. Kemudian dikocok sampai terbentuk larutan yang  keruh.  Kekeruhan  ini  dipakai  sebagai standar  kekeruhan  suspensi  bakteri  uji (Victor, 1980).

## Pembuatan Suspensi Bakteri Uji
Bakteri  uji  yang  telah  diinokulasi diambil  dengan  kawat  ose  steril  lalu disuspensikan kedalam tabung yang berisi 2 ml  larutan  NaCl  0,9%  hingga  di  peroleh kekeruhan  yang  sama  dengan  standar kekeruhan  larutan Mc.  Farland .  Perlakuan yang  sama  dilakukan    pada  setiap  jenis bakteri uji.

## Pembuatan Media Pengujian
Media  uji  dibuat  menggunakan  metode difusi  agar  dengan  cara  tuangkan  NA    10 mL  kedalam  6  cawan  petri  untuk  lapisan dasar setelah lapisan pertama memadat ,pada permukaan  lapisan  dasar  diletakkan  7 pencadang (sumuran ) yang diatur sedemikian  rupa  jajaraknya  agar  daerah pengamat tidak saling bertumbuh, kemudian suspensi    bakteri  dicampurkan  ke  dalam media  pembenihan  NA,setelah  itu  di tuangkan 25 mL NA pada setiap cawan petri untuk lapisan kedua. Selanjutnya pencadang (sumuran  )diangkat  secara  aseptik  dari cawan  petri,  sehingga  terbentuklah  sumur  –
sumur yang akan digunakan dalam pengujian antibakteri.

## Pengamatan dan Pengukuran
Pengamatan  dilakukan  setelah  1x24  jam masa  inkubasi.  Daerah  bening  merupakan petunjuk kepekaan bakteri terhadap antibiotik  atau  bahan  antibakteri  lainnya yang  digunakan  sebagai  bahan  uji  yang dinyatakan  dengan  lebar  diameter  zona hambat  (Vandepitte et  al ,  2005).  Diameter zona hambat diukur dalam satuan milimeter (mm)  menggunakan  mistar  berskala  dengan cara diameter keseluruhan dikurangi diameter  sumuran  7  mm.  Kemudian diameter zona hambat tersebut dikategorikan
kekuatan  daya  antibakterinya  berdasarkan penggolongan Davis and Stout (1971).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Uji  Aktivitas  Antibakteri  Ekstrak  Daun Kelor ( Moringa oleifera L.)
Uji  Aktivitas  Antibakteri  Ekstrak  Daun Kelor  terhadap  bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia  coli menggunakan metode difusi agar dengan cara sumuran dan hasil  pengukuran  rata-rata  diameter  zona hambat  ekstrak  daun  kelor  ( Moringa oleifera L.)  terhadap  bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus dapat dilihat pada Gambar 1 dan Tabel 1.
a b
Gambar 1. Hasil uji aktivitas antibakteri ekstrak daun kelor ( Moringa oleifera L.) terhadap bakteri : (a) Staphylococcus aureus , dan (b) Escherichia coli
Tabel 1. Hasil pengukuran rata-rata diameter zona hambat ekstrak daun kelor ( Moringa oleifera L.) terhadap Bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus Konsentrasi Rata- rata Diameter Zona Hambat Bakteri (mm) Escherichia coli Staphylococcus aureus Kontrol - - - Kontrol + 23.30 29.33 5% 13.33 12.16 10% 14.33 13.66 20% 15.83 16.00 40% 19.50 18.66 80% 22.66 20.50
Ekstrak  Daun  Kelor  ( Moringa  oleifera
L.)  dengan  pelarut  etanol  berperan  sangat nyata  terhadap  bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia  coli .  Menurut Fardiaz  dan  Puspita  (2008),  banyaknya kandungan  senyawa  aktif  antimikroba  yang terkandung  dalam  ekstrak  berpengaruh terhadap  daya  hambat  yang  dihasilkan. Ekstrak  daun  Kelor  dengan  menggunakan pelarut  etanol  menurut  (Vinoth et  al ,  2012) dapat menarik sebagian besar senyawa aktif yang terdapat pada daun kelor, dan dari hasil penelitian tersebut telah dilakukan cara yang sama  maka  tidak  ada  perbedaan  sehingga menunjukan  hasil  yang  sesuai  bahwa  daun kelor  mempunyai  senyawa  yang  dapat menghambat  pertumbuhan  bakteri.  Hasil penelitian  ini  juga  memberikan  hasil  yang sama  bahwa  penggunaan  pelarut  etanol untuk  mengambil  senyawa-senyawa  aktif yang  ada  di  daun  kelor  memberikan  zona hambat terhadap bakteri-bakteri uji.
Pengujian  aktvitas  Ektrak  Daun  Kelor terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli menunjukkan  nilai  berbeda  yang  berarti terdapat perbedaan terhadap pengaruh perlakuan  yang  diberikan  terhadap  bakteri uji.  Hal  ini  menunjukan  bahwa  antara kontrol positif dan 5 seri konsentrasi ekstrak daun  kelor  yaitu  5%,  10%,  20%,  40%,  dan 80%  menunjukan  terdapatnya  aktivitas antibakteri  yang  berbeda  –  beda  terhadap pertumbuhan bakteri baik bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli . Kontrol  negatif  yang  digunakan  yaitu  CMC yang  menunjukan  tidak  adanya  zona hambat.  Hal  ini  mengindikasikan  bahwa kontrol  yang  digunakan  tidak  berpengaruh pada aktivitas antibakteri.
Antibiotik  yang  digunakan  sebagai kontrol positif adalah Ciprofloxacin.
Ciprofloxacin merupakan antibiotik golongan  fluorokuinolon,  yaitu  golongan kuinolon baru dengan atom fluor pada cincin kuinolon.  Fluorokuinolon  mempunyai  daya antibakteri  yang  lebih  besar  dan  toksisitas yang  lebih  rendah.  Menurut  Jawetz et  al (2007), ciprofloxacin memiliki efek antibakteri dengan spektrum luas. Mekanisme kerja ciprofloxacin yaitu dengan menghambat  topoisomerase  II  =  DNA girase)  dan  topoisomerase  VI  pada  bakteri. Enzim topoisomerase II berfungsi menimbulkan  relaksasi  dan  DNA  yang mengalami positive  supercoiling pada waktu  transkrip  dalam  proses  replikasi DNA.  Enzim  topoisomerase  VI  berfungsi dalam pemisahan DNA baru yang terbentuk setelah proses replikasi DNA bakteri selesai (Setiabudy, 2007).
Hasil  yang  diperoleh  seperti  pada  Tabel 2  dan  Tabel  3  terlihat  bahwa  terdapat pertumbuhan  bakteri  yang  berbeda  -  beda. Ekstrak  daun  kelor  ( Moringa  oleifera L.) dengan  konsentrasi  5%,  10%,  20%,  40%, dan 80% mempunyai daya antibakteri mulai dari  sedang  sampai    kuat.  Diameter terbesaryaitu  pada  konsentrasi  80%  (21.50 mm  pada Staphylococcus  aureus dan  24.00 mm  pada Eschericia  coli )  dan  diameter terkecil  pada  konsentrasi  5%  yaitu  11  mm pada Staphylococcus aureus dan 12 mm pada Eschericia coli ).
Pada  tabel 4  dari  data  tersebut menunjukan  pada  konsentrasi  5%,  10%, 20%,  dan  40%  mempunyai  kekuatan  kuat, sedangkan pada konsentrasi80% pada bakteri Staphylococcus  aureus mempunyai kategori  kekuatan  daya  antibakteri    yang
sama  yaitu  kuat.  Perlakuan  pada  bakteri Escherichia  coli pada  konsentrasi  5%,  10%, 20%, dan 40% kategori kuat, dan konsentrasi  80%  termasuk  dalam  kategori sangat kuat.
Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan,  diketahui  bahwa  Ekstrak  Daun Kelor terbukti memiliki aktivitas antibakteri terhadap  bakteri Staphylococcus  aureus dan Escherichia  coli .  Hal  ini  terlihat  dari terbentuknya  zona  hambat.  Seperti  pada penilitian-penelitian  yang  telah  dilakukan sebelumnya dikatakan bahwa senyawa kimia yang terkandung senyawa metabolit sekunder  seperti  flavonoid,  alkaloid,  fenol yang  juga  dapat  menghambat  aktivitas bakteri  (Pandey et  al .,2012).  Senyawa saponin  termasuk  golongan  glikosida    yang terdapat pada berbagai jenis tumbuhan yang berfungsi untuk menyimpan karbohidrat dan sebagai  pelindung  dari  serangan  hama, dengan  mekanisme  menurunkan  tegangan permukaan  dinding  sel  bakteri  sehingga mengakibatkan  naiknya  permeabilitas  atau kebocoran  sel  dan  mengakibatkan  senyawa intraseluler akan keluar (Robinson, 1995).Flavonoid berfungsi sebagai
antioksidan yang mampu menjaga terjadinya oksidasi  sel  tubuh.Menurut  Gisvold  (1982) dalam Sabir  (2005)  disebutkan  bahwa flavonoid menyebabkan terjadinya kerusakan permeabilitas  dinding sel  bakteri, mikrosom,  dan  lisosom  sebagai  hasil interaksi  antara  flavonoid  dengan  DNA bakteri.  Alkaloid  merupakan  golongan  zat tumbuhan  sekunder  yang  terbesar.Alkaloid memiliki  kemampuan  sebagai  antibakteri. Mekanismenya  yaitu  dengan  menggangu komponen  penyusun  peptidoglikan  pada  sel bakteri,  sehingga  lapisan  dinding  sel  tidak
terbentuk  secara  utuh  dan  menyebabkan kematian sel tersebut (Robinson, 1995).

## KESIMPULAN
1. Ekstrak  Daun  Kelor  ( Moringa  oleifera
L.) memiliki aktivitas antibakteri terhadap  bakteri Escherichia  coli dan
Staphylococcus aureus.
2. Dasi  hasil  penelitian  yang  dilakukan didapat Kadar Hambat Minimum
(KHM)  sebesar12  mm  pada  bakteri Escherichia coli dan 11 mm pada bakteri
Staphylococcus aureus.

## SARAN
1. Perlu  dilakukan  penelitian  lebih  lanjut untuk  mengetahui  kandungan  senyawa spesifik yang berkhasiat sebagai antibakteri  pada  tanaman  Daun  Kelor ( Moringa  oleifera L.)  dan  aktivitas antibakterinya terhadap bakteri lain.
2. Perlu  dilakukan  uji  pra-klinis  dan toksisitas  ekstrak  Daun  Kelor  ( Moringa oleifera L.) untuk mengetahui dosis yang tepat dan aman dalam penggunaannya.

## DAFTAR PUSTAKA
Aditya Nugraha. 2013. Bioaktivitas ( Moringa oleifera ) Terhadap Eschericia coli Penyebab Kolibasilosis  Pada  Babi .  UDAYA. Denpasar. Anonim. 1986. Sediaan Galenik .
Departemen Kesehatan RI, Jakarta.
Anwar,  F.,  Latif,  S.,  Ashraf,  M.,  Gilani,
A.H.,  2007. Moringa  oleifera:  A Food  Plant  with  Multiple  Medical Uses.
Dalimartha,  S.  1999. Atlas  Tumbuhan  Obat Indonesia .  Jilid  1.Trubus Agriwidya,
Jakarta.
Djauhariya,  E.,  Hernani.  2004. Gulma Berkhasiat  Obat .  Penerbit  Swadaya. Jakarta
Jawetz  E.,  Melnick  GE.,  Adelberg  CA.
2001. Mikrobiologi Kedokteran. Edisi I. Penerjemah: Bagian Mikrobiologi Kedokteran Universitas Airlangga. Penerbit Salemba Medika, Surabaya.
Halaman 211-249.
Jawetz  E.,  Melnick  GE.,  Adelberg  CA
.2007. Mikrobiologi Kedokteran . Edisi 23. Selamba Medika, Surabaya.
Lay,  B.  W.  1994. Analisis  Mikroba  di
Laboratorium . Edisi 1. Raja
Grafindo Persada, Jakarta.\
Pandey,  A.,  R.D.  Pandey.,  P.  Tripathi.,  P.P.
Gupta.,  J.  Haider.,  S.  Bhatt  .,  A.V Singh.  2012. Moringa  oleifera  Lam.
(Sahijan) – A Plant with Plethora of Diverse  Therapeutic  Benefits:  An Updated Resrospection . Pandeyet al.
Medical Aromatic Plants 2012.
Robinson,  T.  1995. Kandungan  Organik
Tumbuhan Tinggi , cetakan VI
(terjemahan). Penerbit ITB.
Bandung. Hal 367.
Setiabudy,  R.  2007. Antimikroba  :  Dalam Farmakologi  dan  Terapi.  Edisi  V (Cetak  Ulang  Dengan  Perbaikan. 2008). Balai Penerbit FKUI. Jakarta.
Vandepitte.,  J.Engbaek.  K.,  Rohmar.  P., Pint. P., Heuck. C.G. 2005. Prosedur
laboratorium Dasar dan untuk Bakteriologis  Klinis. Edisi  2 . Buku Kedokteran EGC. Jakarta.
Victor,  L.  1980. Antibiotics  in  Laboratory
Test .  The  Williams  and  Wilkins
Company, USA. Vinoth, B., Manivasagaperumal, R., Balamurungan, S., 2012 . Phytochemical Analysis and Antibacterial  Activity  of  Moringa
Oleifera  Lam .  International  Journal of  Research  in  Biological  Sciences 2012; 2(3): 98-102.