## PENAMBAHAN DEKOMPOSER SEBAGAI BAHAN STIMULATOR UNTUK MENINGKATKAN EFEKTIVITAS PESTISIDA NABATI
Julius Juli dan Sri Wahyuni
Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Flores Jl. Sam Ratulangi XX – Paupire, Kabupaten Ende, Propinsi Nusa Tenggara Timur
sriwahyuni4611@gmail.com

## ABSTRACT
Addition  of  Decomposers  as  Stimulators  for  Increasing  the  Effectiveness  of organic  pesticides . This  study  aims  to  determine  the  increased  effectiveness  of  pestisida nabati  which  are  added  to  several  types  of  decomposers.  This  study  uses  a  Completely Randomized  Design  (CRD),  with  5  treatments  and  5  replications  namely:  FO:  Control (water), F1: organic pesticides without the addition of decomposers, F2: organic pesticides +  EM-4,  F3:  organic  pesticides  +  Promi,  F4  :  organic  pesticides  +  rice  washing water.Observation  variables  consisted  of  mortality  of  contact  poison,  stomach  poison, Lethal Time (LT 50%) and the speed of death as well as the attitudes and eating behavior of Parmarion martency. The addition of decomposers to increase the effectiveness of  organic pesticides was significantly different from the control but not significantly different in each treatment  where  the  highest  increase  in  activity  occurred  at  F3 treatment  by  72%  and  the lowest  at  F2  by  68%.Pesticide  formulations  have  activity  as  agents,  contact  poisons  and stomach poisons. Lethan Time 50% (LT50%) occurs fastest in F3 treatment for 48.4 hours with death rate for 0.8 hours / individual in contact poison and LT 50% in stomach poison for  52.0  hours  with  death  rate  0.6  hours  /  individual.Changes  in  behavior  due  to  contact poison activity are characterized by excessive fluid release and subsequently dehydration to result  in  death  which  is  characterized  by  rigid  body  and  stomach  poisoning  behavior  is characterized by slowing movements, staying in one place and dying in reverse.
Keywords : Decomposers, Effectiveness, Organic Pesticides

## PENDAHULUAN
Indonesia
dengan iklim
tropisnyamemiliki  keragaman  hayati  yang luar  biasa.  Pemanfaatan  biodiversity tanaman ini telah banyak diteliti diantaranya  adalah  manfaat  bagi  dunia pertanian  yaitu  sebagai  bahan  pestisida
nabati. Asmaliyah et al (2010) melaporkan  2.400  jenis  tumbuhan  dari 235  famili  dimanfaatkan  oleh  manusia sebagai  sumber  pengendali  hama  dan penyakit. Tanaman-tanaman tersebut telah terbukti  menghasilkan  metabolit  sekunder yang  berfungsi  sebagai  bahan  aktif pestisida nabati (Kardinan, 2011).
e-ISSN : 2715-4955                                                        Ende NTT-Indonesia P-ISSN : 2715-6613
Pestisida merupakan substansi sintetik yang digunakan untuk mengendalikan  berbagai  jenis  hama  dan penyakit  tanaman  sejak  dahulu  namun dengan ditemukan dikloro difenil trikoloretan (DDT)  pada tahun 1939  yang memperlihatkan  hasil  cepat  dan  efektif sehingga  mengubah pola pikir para petani terhadap pestisida kimia sitentik (Djojosumarto, 2008). Seiring berjalannya waktu, diketahui pestisida sintetik menimbulkan ketergantungan dan memberi  efek  negatif  bagi  kesehatan konsumen serta memicu kerusakan lingkungan  akibat  akumulasi  dari  bahan- bahan  berbahaya  dan  berdampak  pada organisme non target bahkan menimbulkan  resistensi  terhadap  hama. Oleh  sebab  itu,  petani  mulai  diarahkan untuk mengendalikan hama yang menyerang tanaman dengan menggunakan pestisida  nabati  yaitu  pestisida  berbahan dasar  dari  tumbuh-tumbuhan  (Mirin, 1997).
Menurut FAO (1988) dan US EPA (2000), pestisida nabati dapat digolongkan kedalam  kelompok  pestisida  biokimia karena mengandung biotoksin.Secara umum  tanaman  mengandung  banyak bahan  aktif  yang  digunakan  sebagai  alat
untuk pertahanan alami terhadap serangan organisme pengganggu tanaman. Tumbuhan banyak memiliki bahan bioaktif,  walaupun  hanya  sekitar  10.000 jenis  produksi  metabolit  sekunder  yang telah  terindentifikasi,  tetapi  sebenarnya jumlah  bahan kimia pada tumbuhan dapat melampaui  400.000 (Grainge et al ., 1988; dan Sastrosiswojo, 2002).
Tanaman  yang  memiliki  senyawa aktif pestisida nabati dan mudah ditemukan  di  alam  diantaranya  adalah tumbuhan  sirsak  ( Annona  muricata L.), kirinyuh ( Chromolaena odorata L), lengkuas  ( Alpinia  galanga L),  dan  serai ( Andropogon  citrates  L ).  Hasil  penelitian dari  beberapa  peneliti  memperlihatkan bahwa  pestisida  nabati  dari  daun  sirsak, mengandung bahan aktif golongan senyawa Flavonoid yang  bersifat  toksik dan bekerja sebagai racun kontak (Desiyanti et  al., 2016;  Hermawan  dan laksono, 2013). Sedangkan ekstrak rimpang  lengkuas  dengan  konsentrasi 0,75% efektif menghambat perkembangan koloni Oncobasidium  theobromae (Suaib et  al .,  2016).  Sementara  itu  ekstrak  daun kirinyuh  memilki  kandungan  senyawa bioaktif  yang  bersifat  toksik  kontak terhadap Captotermes sp. (Hadi, 2008) dan
efektif sebagai  bioherbisida pra tumbuhan untuk  mengendalikan  gulma  di  areal perkebunan  kelapa  sawit  (Sari et  al ., 2017). Tanaman serai mengandung senyawa  kimia  alkaoida,  flavonoida  dan minyak  atsiri  (Pitojo  dan  Zumiati,  2003). Kandungan  minyak  atsiri  terdiri  dari senyawa sitral, sitronela, geraniol, mirsena,  nerol,  farsenol  yang  dapat berfungsi  sebagai  aktraktan  dan  racun perut  yang  dapat  mengendalikan  hama gudang dari family Coleoptera (Muhlisah, 2000).
Kirinyuh,  serai,  rimpang  lengkuas dan sirsak dapat digunakan secara tunggal maupun  secara  bersamaan  (formulasi), untuk  meningkatkan  efektivitas  formulasi pestisida , maka dari beberapa peneliti dan praktisi menambahkan bahan-bahan bawaan  seperti tween 20 yang digunakan sebagai  bahan  perekat,  ditergen  sebagai pencuci  atau  stimulator  dan  bahan dekomposer  seperti,  EM-4 , Promi  dan  air cucian beras.
EM-4  ( Effective  Microorganism) memiliki kandungan mikroorganisme, yakni  bakteri  asam  laktat  ( Lactobacillus sp), bakteri fotosintetik ( Rhodopseudomonas ), Actinomycetes  sp, Streptomyces  sp,  yeast  ( Ragi).  EM-4
memiliki kemampuan untuk dapat membantu  penyerapan  unsur-unsur  bahan aktif pada tanaman, agar cepat dimanfaatkan.  Penggunaan  EM-4  ini untuk  dapat  meningkatkan  efektivitas bahan  aktif  sebesar  18,89%  (Harsaya  G, 2019).  Promi  merupakan  dekomposer mengandung mikroba Trichoderma harzianum DT 39, Aspergillus sp, Pseudokoningii DT  39 , sehingga Mikroba pelapuk yang mampu mempercepat pengomposan, memacu pertumbuhan, melarutkan  bahan  aktif  pada  bahan pestisida  dan  mampu  mengendalikan penyakit tanaman (Taniwiryono D, 2010). Air  cucian  beras  merupakan  limbah  yang dihasilkan  dari  aktivitas  rumah  tangga yang  efektivitasnya  dapat  menurunkan populasi Plutellaxylostella  L sebanyak 85,71%  pada  tanama  sawi  dan  efektif mengendalikan  walang  sangit,  ulat  dan serangga  lainnya  (Atifah  Y et  al ,  2019). Sehingga air cucian beras juga direkomendasikan    sebagai  salah  satu jenis  dekomposer  pemicu  aktivitas  pada formulasi  pestisida  nabati  (Fatmawati, 2008).
Penelitian  tentang  pestisida  nabati penting  untuk  dikembangkan  mengingat kelebihannya yang dapat menjamin
keberlanjutan  system  pertanian  dengan tetap tidak  menghilangkan organisme  non target.    Kondisi  demikian  menjamin terjadinya keberlanjutan dan keseimbangan  ekosistem.    Selain  itu, penggunaan  pestisida  pada  daerah-daerah kering  sangat  dianjurkan  karena  selain berfungsi sebagai pengendali hama, pestisida  nabati  juga  dapat  berfungsi sebagai  pupuk  bagi  tanaman  dan  sumber bahan organic bagi tanah.

## METODE PENELITIAN

## Tempat dan Waktu
Penelitian  ini  dilaksanakan  di Laboratorium Fakultas Pertanian Universitas  Flores,  Jalan  Sam  Ratulangi XX, Kabupaten Ende. Penelitian
dilakukan  pada  bulan  Maret-Agustus 2019.  Dengan  suhu  harian  rata-rata  30 o C dan kelembaban rata-rata 80%

## Bahan dan Alat
Bahan  yang  digunakan  terdiri  dari daun  sirsak  ( Annona  muricata L.),  daun kirinyuh  ( Chromolaena  odorata  L .),  serai ( Andropogon citrates L ), rimpang lengkuas  ( Alphinia  galanga  L ),  EM4,
Promi,  air  bersih,  batang  talas,  kertas label,air cucian beras dan hama
Parmarion  martensi .  Peralatan  yang digunakan  antara  lain  timbangan  analitik, pipet tetes, pinset, spatula, gelas ukur, Petridish ,  spoit, timer,  kamera,  buku dan pulpen.

## Rancangan Percobaan
Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL)  dengan 5 perlakuan  yaitu:
FO  : Kontrol (air)
F1 :  Formulasi  pestisida  (Kirinyuh  250 gr + Sirsak 250 gr + Lengkuas 250 gr + Serai 250 gr) / 5 liter air F2 :  Formulasi  pestisida  (Kirinyuh  250
gr +Sirsak 250 gr + Lengkuas 250 gr  +  Serai  250  gr)  /  5  liter  air  + EM4 9 ml
F3 :  Formulasi  pestisida  (Kirinyuh  250 gr +Sirsak 250 gr + Lengkuas 250 gr  +  Serai  250  gr)  /  5  liter  air      +
PROMI 8,125 gr
F4 :  Formulasi  pestisida  (Kirinyuh  250 gr +Sirsak 250 gr + Lengkuas 250 gr  +  Serai  250  gr)  /  5  liter  Cucian air beras
Setiap perlakuan diulang sebanyak 5  kali  sehingga  akan  memperoleh  25  unit percobaan untuk setiap parameter pengujian.
Persiapan Parmarion  martensi sebagai Bahan Uji
Metode  pelaksanaan  penelitian mengikuti  metode  yang  dilakukan  oleh Una  dan  Wahyuni  (2019). Parmarion martensi diperoleh  dari  lapang  kemudian disortir  berdasarkan  ukuran  dandisimpan dalam  beberapa  toples.    Selama  dalam masa  penyimpanan, P.  martensi diberi makan  dengan  batang  talas. Parmarion martensi yang dijadikan sebagai bahan uji adalah  yang  memiliki  ukuran  dan  berat yang sama.
Proses Pembuatan Pestisida
Teknik pembuatan pestisida nabatiyaitu Daun kirinyuh, Sereh, Rimpang  lengkuas  dan  Sirsak  ditimbang masing-masing seberat 250 gram. Kemudian  di  cacah  dan  dihaluskan dengan blender secara terpisah.
Selanjutnya  bahan  dimasukkan  kedalam jarigen  masing-masing  sesuai  dengan perlakuan  untuk    didiamkan    selama  24 jam. Bahan di saring dengan menggunakan kain kasa dan diaplikasikan dengan  perbandingan  ekstrak  pestisida  1 ml : 5 ml air bersih.
Aplikasi Perlakuan 1. Racun kontak
Aplikasi pestisida nabatiuntuk mengetahui  aktivitasnya  sebagai  racun kontak yaitu 5 ekor bahan uji di masukkan ke  dalam  toples  perlakuan,  selanjutnya setiap  ekor  bahan  uji  disemprotkan dengan  ekstrak  pestisida  nabati  sebanyak 0,5  ml  dan  diamati  setiap  perubahan perilaku serta morfologi bahan uji.
2. Atraktan , Repellent, Racun  perut  dan Perilaku Makan
Aplikasi Atractan, Repelant,
Racun  Perut  dan  Perilaku  makan  yaitu batang  talas  sebagai  bahan  pakan P. martensi di  timbang  dengan  berat  yang sama yaitu 2 gram. Batang talas direndam dalam  formulasi  pestisida  nabati  sesuai perlakuan  selama  15  menit,  kemudian ditiriskan  selama  10  menit  sebelum diberikanpada P.martensi yang  telah dipuasakan  selama  24  jam.  Selanjutnya diamati reaksi P. martensi terhadap pakan.
3. Lethal Time 50%  dan  Kecepatan
Kematian
Lethal  time  dihitung  berdasarkan catatan waktu keberapa bahan uji mencapai  kematian  ≥  50%  dari  populasi awal.  Kecepatan kematian dihitung mulai saat P.  martensi diberikan  perlakuan, waktu  kematian  dan  jumlah P.  martensi yang  mati  dihitung  untuk  mendapatkan
kecepatan waktu kematian per ekor bahan uji (menit/ekor).
Parameter Pengamatan
Parameter  yang  digunakan  dalam penelitian ini adalah
1. Mortalitas (%)
Mortalitas  pada  kedua  jenis  uji aktivitas  tersebut  dihitung  berdasarkan rumus  yang  digunakan  oleh  Fagoone  dan Lauge, (1981) dan Sinaga, (2009)
𝑀 = 𝑏 𝑎 + 𝑏 𝑥100%
Dimana :
M  = Mortalitas a = Bahan ( P. martensi) uji yang hidup b = Bahan uji yang mati
2. Lethal Time (LT 50%) dan kecepatan
kematian
Pengamatan  Lethal  Time  dihitung untuk mengetahui seberapa cepat kerjapestisida  nabati  untuk  mematikan bahan  uji  sebanyak  50%  dari  populasi, dihitung  dengan  cara  mengamati  waktu kematian  (jam  keberapa)  dan  menghitung jumlah  bahan  uji  yang  telah  mati  lebih dari  50%.  Sedangkan  kecepatan  kematian perindividu dihitung
dengan
menggunakan  rumus  menurut  Fagoone dan  Lauge,  (1981)  dan  Sinaga  (2009) berikut :
𝑉 = 𝑇1𝑁1 + 𝑇2𝑁2 + 𝑇3𝑁3 … … 𝑇𝑛𝑁𝑛 𝑛
Dimana :
V  = Kecepatan Kematian (jam/individu) T  = Waktu Pengamatan (jam)
N  = Jumlah bahan uji yang mati (ekor) n  = Jumlah seluruh bahan uji (ekor)
3. Atraktan dan Perilaku makan
Diamati  saat  pemberian  pakan yang  telah  diberi  perlakuan,  perilaku atraktan  ditandai  dengan  ketertarikan P. martensi pada  pakan.    Perilaku  makan diamati  selama  3  hari  setiap  3  jam  dan dicatat  setiap  perubahan  perilaku  maupun morfologi  bahan  uji  akibat  aktivitas makan.

## Analisis Data
Data  hasil  pengamatan  dianalisis dengan analisis sidik ragam dan uji varian 5%,  apabila  perlakuan  berpengaruh  nyata terhadap  variable  yang  diamati,  maka dilanjutkan  dengan  uji  BNT  5%  (Gomez dan Gomez, 1995).

## HASIL DAN PEMBAHASAN Mortalitas Racun Kontak
Hasil analisis sidik ragam aktivitas racun  kontak  pada Parmarion  martensi memperlihatkan  pengaruh  yang  sangat nyata  dibandingkan  dengan  F0  (kontrol),
tetapi  tidak  berbeda  nyata  pada  setiap
perlakuan (Tabel 1).
Tabel 1 Rata-rata Presentase Mortalitas Racun Kontak Parmarionmartensi Perlakuan Volume Persentase mortalitas (ml) 24 Jam 48Jam 72Jam F0 0,5 0,00 b 0,00 b 0,00 b F1 0,5 16,00 a 16,00 a 32,00 a F2 0,5 12,00 a 16,00 a 28,00 a F3 0,5 12,00 a 32,00 a 28,00 a F4 0,5 24,00 a 20,00 a 24,00 a BNT 3,46 2,23 4,22
Keterangan :  angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom  yang  sama,  berarti  tidak  berbeda nyata pada uji BNT taraf 5%. Data ditransformasi dengan Arcsin √ x
Tabel  1  memperlihatkan  bahwa Kontrol (F0) tidak memberikan efek racun kepada P. martensi. Sementara itu seluruh perlakuan  dapat  menyebabkan  mortalitas pada  bahan  uji  dengan  tingkat  kematian tertinggi  pada  perlakuan  F3  sebesar  72% dan  terendah  pada  perlakuan  F2  sebesar 68%. Namun demikian tidak ada perbedaan yang nyata pada setiap perlakuan,  artinya  seluruh  perlakuan memiliki  efek  racun  yang  sama  bagi P. martensi. Kondisi  tersebut  disebabkan oleh  kandungan  senyawa  kimia  pada bahan  ekstrak  pestisida  (kirinyuh,  serai, rimpang lengkuas, sirsak) yakni terpenoid, tanin,  saponin,  fenol,  alkoid,  steroid  dan flavonoid yang umumnya dapat menyebabkan efek racun bahkan menimbulkan  kematian  pada  beberapa jenis  hama.  Hasil  penelitian  ini  diperkuat
dengan  hasil  penelitian  Setiawaty  (2002) yang  menyatakan  bahwa  kandungan senyawa  tersebut  merupakan  zat  aktif yang  memiliki  potensi  sebagai  insektisida nabati  yang  dapat  mempengaruhi  sistem saraf  atau  otot,  reproduksi,  perilaku  dan sistem pernafasan pada hama.
Sementara  itu,  penambahan  bahan dekomposer pada ekstrak pestisida  nabati pengaruhnya  sama  pada  setiap  perlakuan, hal tersebut kemungkinan disebabkan oleh kurangnya  waktu  perendaman  bahan dimana  pada  perlakuan  ini  dilakukan untuk  frementasi  selama  24  jam  saja, sehingga memungkinkan belum maksimalnya kerja mikroba dalam melakukan  penguraian  bahan  aktif.  Hasil penelitian Amri et al (2006) mengemukakan  bawha  semakin  lama perendaman ekstrak pestisida akan
memperbanyak  konsentrasi  senyawa  aktif yang  keluar  dari  bahan  pestisida  tersebut sehingga  jumlah  kematian  hama  uji  pun meningkat.
Racun Perut, Aktratan dan Perilaku
Makan Parmarion
martensi memperlihatkan reaksi ketertarikan terhadap  pakan  yang  telah  diberikan perlakuan.  Hal  ini  dibuktikan  dengan perilaku mencari pakan yang dimulai rata- rata  pada  menit  ke  15  (Tabel  2),  dan aktivitas  makan  tetap  berlangsung  hingga hari  ke-tiga.    Aktivitas atraktan dapat disebabkan  oleh  adanya  minyak  atsiri yang  mengandung  senyawa metil  eugenol seperti yang terdapat pada tanaman seraih, senyawa  ini  menghasilkan  aroma  yang dapat  menimbulkan  reaksi  ketertarikan hama  pada  bahan,  kondisi  yang  demikian diperkuat  oleh  penelitian  Mardani  (2013) yang menyatakan bahwa beberapa tanaman  yang  mengandung  minyak  astiri seperti  seraih,  cengkeh  dan  kemangi dengan  kandungan  minyak  astiri  rata-rata 32-45%  dapat  mempengaruhi    aktivitas atraktan pada beberapa jenis hama.
Aktivitas makan yang mulai terjadi di  hari  pertama  sesaat  setelah  pemberian pakan  ditandai  dengan  perilaku  makan
yang  rakus,  namun  sejalan  dengan  waktu aktivitas makan mulai melambat.  Kondisi ini  disebabkan  karena  bahan  aktif  yang termakan oleh P. martensi telah memberikan  reaksi  yang  ditandai  dengan pergerakan
P.martensi melambat, produksi  lendir  yang  berlebih  dengan perubahan warna lendir dari cairan bening menjadi  lendir  putih,  perubahan  warna tubuh P.  martensi juga  terlihat  jelas  yang awalnya  berwarna  hitam  berubah  menjadi putih keabu-abuan dan selanjutnya mengalami kematian yang ditandai dengan tubuh keras dan kaku. Selain itu, P .martensi dapat  dengan  mudah  dibalik akibat  telah  mengalami  kehilangan  daya lekatnya (Gambar 1).
a. Parmarion martensi sehat b. Parmarion  martensi berubah warna dan kaku
Gambar  1.  Mortalitas P.  martensi akibat aktivitas Racun Perut pestisida nabati
Terjadinya  kematian P.  martensi akibat  pemberian  perlakuan  pada  bahan
makanan  membuktikan  bahwa  perlakuan memiliki  aktivitas  sebagai  racun  perut.
Mortalitas  akibat  aktivitas  racun  perut dapat diperlihatkan pada tabel berikut: Tabel 2.Presentase Mortalitas akibat aktivitas Racun perut pada P.martensi Perlakuan Volume Persentase mortalitas P.martensi (%) (ml) 24 Jam 48 Jam 72 Jam F0 0,5 0,00 b 0,0 b 0,00 b F1 0,5 8,0 a 24,0a 32,0 a F2 0,5 20,0 a 24,0 a 32,0 a F3 0,5 24,0 a 32,0 a 24, 0 a F4 0,5 24,0 a 24,0 a 28,0 a BNT 3,60 2,56 1,65
Keterangan :   angkayang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom  yang  sama,  berarti  tidak  berbeda
nyata pada uji BNT taraf 5%. Data ditransformasi dengan Arcsin √ x
Tabel  2  memperlihatkan  perlakuan F1, F2, F3 dan F4  memberikan  hasil  yang berbeda nyata terhadap kontrol tetapi tidak berbeda  nyata  pada  setiap  perlakuan. Penggunaan    beberapa  jenis  dekomposer pada  perlakuan  memberikan  efek  yang sama  dan  belum  berpengaruh  terhadap peningkatan  efektivitas  pestisida  nabati. Selain  karena  waktu  perendaman  yang singkat,  metode ekstraksi yang digunakan belum  mampu  melarutkan  bahan  aktif secara  optimal.  Secara  umum  untuk  skala laboratorium  pelarut  yang  digunakan adalah  bahan  dari  turunan  Alkohol  seperti etanol  ataupun  methanol  dan  selanjutnya dilakukan  proses  evaporasi  untuk  betul- betul mendapatkan bahan aktif. Penambahan bahan tersebut paling dianjurkan untuk digunakan sebagai
pelarut  dalam  mengekstraksi  metabolit sekunder pestisida (Saifudin, 2014). Karena methanol merupakan bahan pelarut polar  dalam  proses  ekstraksi,  kondisi tersebut  di  dasarkan  pada  penelitian  Sari dan Saati (2003) bahwa methanol merupakan pelarut polar dengan titik didih 65 o C sehingga bahan larutan tidak mengalami kerusakan. Hal yang sama juga dikemukakan oleh Hidayat (2006)
methanol sebagai pelarut yang dikombinasikan dengan asam seperti asam klorida,  asam  asetat,  asam  forma,  asam aksorbat  dapat  meningkatkan  penyerapan bahan aktif tanaman.
Tabel  2  memperlihatkan  mortalitas pada  perlakuan    F1  (tanpa  penambahan dekomposer) yang mengindikasikan bahwa  F1  dengan  kandungan  ekstrak  4
jenis  tanaman  sesungguhnya  telah  mampu memberikan  efek  sebagai  racun  dan menimbulkan  kematian  62%,  konsentrasi bahan  ini  belum  dapat  dikatakan  efektif karena  belum  menimbulkan  kematian diatas 80%.  Menurut  Mumford & Norton (1984) pestisida  yang efektif adalah bahan pestisida yang mampu menimbulkan kematian  di  atas  80%  dari  populasi. Sementara  itu  pada  perlakuan  pemberian dekomposer  baik  F2,  F3  dan  F4  hanya mengalami  peningkatan  kematian  sebesar 13,33%  dari  F1  sehingga  belum  dapat dinyatakan  adanya  pengaruh  decomposer terhadap  efektivitas  pestisida.    Faktor lainyang  mengakibatkan  perlakuan  tidak berbeda  nyata  adalah  bahan  uji  yang digunakan  yaitu P.  martensi .  Secara
fisiologi, P. martensi memiliki mekanisme dalam  menetralkan  racun  dengan  cara memproduksi  lendir  berlebih  sebagai upaya melakukan adaptasi terhadap perlakuan.    Selain  itu,  hama  yang  tidak tergolong  dalam  jenis  serangga  tidak memiliki elastisitas genetic yang menyulitkan peneliti untuk melihat perubahan fisiologis yang sekecil-kecilnya. Lethal Time (LT 50) dan Kecepatan

## Waktu
Hasil  pengamatan  Lethal  Time (LT50)  racun  kontak  dan  racun  perut memperlihatkan bahwa perlakuan berpengaruh    tidak  nyata  terhadap  waktu yang  dibutuhkan  ekstrak  pestisida  untuk mematikan  50%    populasi P.  martensi.
Tabel 3. Presentase Lethal Time (LT 50) dan Kecepatan Waktu  dengan beberapa perlakuanyang   diaplikasikan pada P.martensi Perlakuan Racun kontak Racun Perut Mortalitas (%) LT 50 (Jam) Kecepatan waktu (jam/individu) Mortalitas (%) LT 50 (Jam) Kecepatan waktu jam/individu) F0 0 b 72,0 b 0,0 b 0 b 72,0 b   0,0 b F1 64a 56,4 a 0,7 a 60 a 54,0 a  0,8 a F2 56 a 49,0 a 1,0 a 80 a 52,2 a   0,5 a F3 72 a 48,4  a 0,8 a 80 a 52,0 a  0, 6a F4 68 a 60,0 a 0,8 a 76 a 60,6 a  0,6 a BNT 9,71 4,80 0,21 10,38 5,36 0,13
Keterangan :  Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom  yang  sama,  berarti  tidak  berbeda nyata pada uji BNT taraf 5%.
Table  3.  menunjukkan  bahwa
waktu yang paling cepat dalam mematikan P .martensi 50 %  pada racun kontak  adalah  F3  dengan  masa  LT  50% adalah  48,4  jam  (72%  mortalitas)  dengan waktu  kecepatan  kematian  selama  0,8 jam/individu,  sementara  itu  LT50  %  pada racun  perut  selama  52,0  jam  (80% mortalitas)  dengan  kecepatan  kematian 0,6 jam/individu. Kondisi tersebut memperlihatkan bahwa kecepatan kematian  dapat  ditingkatkan  apabila senyawa terpenoid, tannin, saponin, fenol, alkoid,  steroid  dan  flavonoid,  mempunyai konsentrasi  yang  cukup  pada  bahan. Senyawa bioaktif yang cukup dan terkandung  dalambahan  ekstrak  pestisida serta  adanya  senyawa  terpenoid  yang bersifat toksin dapat bekerja sebagai racun kontak  dan  racun  saraf,  kondisi  tersebut diperkuat  dengan  hasil  penelitian  Yunita et  al. (2009)  dan  Susana  (2003)  bahwa semakin tinggi konsentrasi senyawa  maka akan  memberikan efek terhadap bahan uji semakin tinggi sementara itu Sodiq (2004) dan  Prabowo  (2010)  yang  menyatakan bahwa  bahan  aktif  yang  bekerja  sebagai racun perut akan mempengaruhi metobolisme  bahan  uji  setelah  memakan pakan yang diberikan perlakuan.

## SIMPULAN
Penambahan  decomposer  untuk meningkatkan  efektivitas  pestisida  nabati berbeda  nyata  terhadap  kontrol  tetapi tidak berbeda  nyata  pada setiap perlakuan dimana  peningkatan  aktivitas  tertinggi terjadi  pada  perlakuan  F3  sebesar  72% dan  terendah  pada  F2  sebesar  68%. Formulasi  pestisida  memiliki  aktivitas sebagai  atractan,  racun  kontak  dan  racun perut. Lethan  Time 50%  (LT50  %) tercepat  terjadi  pada  perlakuan  F3  selama 48,4  jam  dengan  kecepatan  kematian selama0,8  jam/  individu  pada  racun kontak  dan  LT  50  %  pada    racun  perut selama  52,0  jam  dengan  kecepatan kematian 0,6 jam/individu.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Penulis  mengucapkan  terimakasih yang  tak  terhingga  kepada  rekan  –  rekan peneliti  Sabina  Sunarti  Una  dan  Hasrul yang  telah  menemani  penulis  selama proses  penelitian  dan  Ibu  Nona  yang memantau  selama  kegiatan  penelitian  di laboratorium  berlangsung  serta  semua pihak  yang  telah  memberikan  sumbangan pikiran  dan  tenaga  selama  penelitian berlanagsung  yang  tidak  bisa  penulis sebutkan satu persatu.

## DAFTAR PUSTAKA
Anonim.2005.Serangan Thrips. http://www.indoneem.com/ Versi_indo/  intaran/new  _projects/ Proyek  baru.html
Anonimus. 2009. Kalian. http://bangkittani.com/kiat- suskses/tanaman-kialan-digemari- waisatawan-mancanegara
Asmaliyah.,  Erik.,  Erna,  Wati.  H.,  Sri,S., Kusdi.  M.,  Yudhistira.,  dan  Fitri,W. S.  2010.  Pengenalan  Tumbuhan Penghasil Pestisida nabati dan
Pemanfaatannya Secara Tradisional. Jakarta. Kementerian Ketuhan Badan Penelitian dan Pengenmbangan  Kehutanan  Pusat Penelitian dan Pengembangan Produktivitas Hutan Anonim. 2013. http://imehyuu.blogspot.co.id (diakses tanggal 20 April 2016)
Atifah,Y.,Nurmani, G., Fatima,S.H.
2019.Efektivitas  Air  Cucian  Beras Sebagai  Pestisida  Alam  Terhadap Hama  Ulat  dan  Sawi.  Renpory. Universitas  Muhamadya  Taparuli
Selatan.
Desiyanti,  N.  M.  D.  I.,  Surantara,  M.D., dan  Surdiarta,  I.P.  2016.  Uji Efektivitas dan Indentifikasi Senyawa  Aktif Ekstrak Daun Sirsak sebagai  Pestisida  nabati  Terhadap Mortalitas  Kutu  Daun  Persik( Myzus persicae Sulz) pada Tanaman Cabai Merah  ( Capsicum  annum L) J.
kimia 10 (1):16.
Djojosumarto, P. 2008. Panduan Lengkap Pestisida  dan  aplikasinya. Jakarta: Agromedia Pustaka
Grainge,  M  dan  Ahmed,  S.  1988. Handbook  of  Plants  with  Pest-
Control  Properties .  John  Wiley  & Sons. Inc. Canada. 470 hlm.
Gomez, K.A., Gomez,A.A. 1995. Prosedur  Statistik  untuk  Penelitian Pertanian. Edisi ke Jakarta:
Universitas Indonesia
Gapoktan.2009.  Pengendalian  Hama  dan Penyakit  dengan  Pestisida  nabati. http://gapoktantanimaju .
blogspot.com/  com/  2009/  pestisida- nabati.
Harsaya,  G.  2019.  Penggunaan  EM4
Sebagai  Pestisida  Organik  Yang Ekonomis  dan  Ramah  Lingkungan, Sipotori. Universitas Muslim
Indonesia.
Hadi,  M.,  Hidayat,  J.W.,  Baskoro,  K.
2008. Uji  Potensi  Ekstrak  Daun Eupartorium odoratum sebagai Bahan Insektisida Alternatif: Toksisitas  dan  Efek  Antimakan Terhadap  Larva  Heliothis  armigera Hubner. Jurnal Sains dan Matematika.  Fakultas  MIPA  Undip. Semarang.
Hadi,  M.  2000. Pembuatan  kertas  anti rayap  ramah  lingkungan  dengan memanfaatkan ekstrak daun kirinyuh (Eupatorium  odoratum).
Bioma 6(2) : 1218.
Hidayat,  S.  2006.  Karakterisasi  senyawa aktif  ekstrak  daun  sirsak( Annona muricata L) dan aktivitas
sitotoksiknya pada sel murin leukemia p-388. Tesis. Sekolah pascasarjana Institut Pertanian
Bogor.
Herman,G.P  dan  Laksono,  H.  2013. Ekstraksi  daun  sirsak  ( Annona muricata )  menggunakan  pelarut etanol    Teknologi  Kimia  dan Industri. 2 (2):11-115.
Kardinan,  A.  2011. Penggunaan  Pestisida nabati  Sebagai  Kearifan  Lokal dalam Pengendalian Hama Tanaman  Menuju  Sistem  Pertanian Organik.  Pengembangan  Inovasi Pertanian 4(4) : 262-278. Mirin,  A.  1997.  Percobaan  pendahuluan pengaruh  ekstrak    daun  Nimba terhadap pertumbuhan jamur colletotrichum  capsici .  Risalah Kongres  nasional  XIII  dan  seminar nasional  perhimpunan  Fitopatologi Indonesia, mataram 25-27 September 1995. Mumford, J. D., Norton. 1984. Economics of decision making in pest management. Annual  review  of entomology , 29(1), 157-174.
Muslimah,  F.  Taman  Obat  Keluarga.  PT.
Penebar Swadaya. Jakarta.
Prabowo,  H.  2010.  Pengaruh  Ekstrak Daun Nerium  oleander L.  Terhadap Mortalitas dan perkembangan Hama Spodoptera litura Fab. Biota 15(3).
Pitojo.,  Zumiati.  2003.  Tanaman  bumbu dan  Pewarna  Nabati.  Aneka  Ilmu. Semarang.
Sastrosiswojo.  2002.  Penerapan  teknologi PHT  pada  tanaman  kubis.  Balai Penelitian Tanaman Sayuran; Monografi No. 21 Bandung. Sari  V.I.,  Hafif,  R.A.,Soesatrijo,J.  2017. Ekstrak gulma kirinyuh (Chromolaena odorata ) sebagai bioherbisida  pra  tumbuh  untuk pengendalian  gulma  di  perkebunan kelapa sawit. J.Citra Widya Edukasi. 9(1):71-79.
Samsudin. 2008. Virus patogen serangga : Bioinsektisida  Ramah  Lingkungan , Diunduh dari
http://Lembaga_Pertanian_sehat/ , Diakses pada tanggal 1 Maret 2017.
Setiawati,  W.  2000. Tumbuhan  dan  cara pembuatannya  untuk  pengendalian Organisme  Pengganggu  Tumbuhan. Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Jakarta. Suaib, I.S., Lakani,L.,Panggeso,J. 2016.Efektifitas  Ekstrak  Rimpang Lengkuas dalam menghambat aktivitas  cendawan Oncobasidium theobremae secara in-vitro . J Agrotekbis 4(5): 506511.
Susana,  Dewi,  A.,  Rahman.,  Eram,T.P. 2003.  Potensi  Daun  Pandan  Wangi Untuk  Membunuh  Larva  Nyamuk Aedes  Aegypti” Jurnal  Ekologi Kesehatan.
Saifudin  .  2014. Senyawa  alam  metabolit sekunder. Yogyayakarta: Deepblish.
Sudarmo,  S.  2005 .  Pestisida  nabati Pembuatan  dan  Pemanfaatanya . Yogyakarta: Kanisius. 58 hlm.
Una,  S.S;  Wahyuni,  S.  2019.    Aktivitas Pestisida Nabati pada Siput Setengah Telanjang Parmarion martensi (Gastropoda : Ariophantidae). J. Agrica 12 (1) : 1- 11. Yunita,  E.A.,  Nanik  H.S.,  Jafron,  W.  H. 2009. Pengaruh Ekstrak Daun Teklanup  ( Eupatorium  riparium ) terhadap Mortalitas dan Perkembangan Larva Aedes aegypti. BIOMA.  Vol.11,  No  1:11- 17.