p-ISSN: 2086-8277
e-ISSN: 2807-3282

## KAJIAN FUNGI MIKORIZA ARBUSKULA DAN POPULASI BAKTERI PADA MIKORHIZOSFER SEMAI MAHONI (Swietenia macrophylla King.) DALAM POT ORGANIK
Study of Arbuscular Mycorrhizal and Bacterial Populations on Mycorrhizosphere of Mahagony ( Swietenia macrophylla King.) Seedlings in Organic Pots
Sri Wilarso Budi 1* dan Ayudia Febrina 1
(Diterima 30 Juli 2023 /Disetujui 27 September 2023)

## ABSTRACT
The mycorrhizosphere is the zone of soil influenced by roots colonized by mycorrhizal fungi and contains many microorganisms.  This  study  aims  to  analyze  mycorrhizal  and  bacterial  populations  in  the  mycorrhizosphere  of mahogany (Swietenia macrophylla King.) seedlings growing in silica sand post-mining media by using organic pot as container growth media. The experimental design used was a Completely Randomized Design (CRD) consisting of two treatments, namely the composition and size of organic pot materials. The results showed that the composition of the  organic  pot  could  affect  the  presence  of  AMF  spores.  The  organic  pots  composition  of  50%  newspaper,  35% compost, and 15% cocopeat showed the best results for the development of AMF spores and bacterial colonies, the development of AMF spores and bacterial colony populations in growing media was better than the development of AMF spores and bacterial colonies in organic pots. There are seven different morphological characters of bacterial colonies which are dominated by round, thready, flat, and white.
Keywords: arbuscular mycorrhizal fungi (AMF), bacteria, correlation, mahagony, mycorrhizosphere

## ABSTRAK
Mikorhizosfer merupakan zona tanah di sekitar perakaran tumbuhan yang bermikoriza dan umumnya terdapat banyak mikroorganisme. Penelitian ini bertujuan untuk untuk menganalisis populasi mikoriza dan bakteri pada daerah mikorhizosfer  semai  mahoni  ( Swietenia  macrophylla King.)  yang  tumbuh  di  media  pascatambang  pasir  silika menggunakan  wadah  media  pot  organik.  Rancangan  percobaan  yang  digunakan  adalah  Rancangan  Acak  Lengkap (RAL) yang terdiri atas dua perlakuan, yaitu komposisi dan ukuran bahan pot organik. Hasil penelitian menunjukkan komposisi  pot  organik  mampu  mempengaruhi  keberadaan  spora  FMA.  Komposisi  pot  organik  50%  koran,  35% kompos,  dan  15% cocopeat menunjukkan  hasil  terbaik  untuk  perkembangan  spora  FMA  dan  koloni  bakteri, perkembangan  spora  FMA  dan  populasi  koloni  bakteri  dalam  media  tanam  lebih  baik  dibandingkan  dengan perkembangan spora FMA dan koloni bakteri dalam pot organik.  Terdapat tujuh karakter morfologi koloni bakteri berbeda yang didominasi oleh bundar, berbenang, rata, dan berwarna putih.
Kata kunci: bakteri, fungi mikoriza arbuskula (FMA), korelasi, mahoni, mikorizosfer
1,2 Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan dan Lingkungan, IPB University Jl. Ulin Kampus IPB, Dramaga, Bogor, Jawa Barat, Indonesia 16680
*  Penulis korespondensi:
e-mail: swilarso@apps.ipb.ac.id

## PENDAHULUAN
Mikorhizosfer  merupakan  zona  tanah  di  sekitar perakaran  tumbuhan  yang  bermikoriza,  menjadi lingkungan yang kritis bagi perkembangan mikroorganisme.  Faktor-faktor  seperti  eksudat  akar, yang  mengandung  karbon  organik,  memainkan  peran penting  sebagai  sumber  makanan  dan  energi  bagi mikroorganisme  di  mikorhizosfer  (Sylvia et  al. 2005; Guckert et al. 1991; Rao 1994). Namun, gangguan pada daerah  mikorhizosfer  dapat  menyebabkan  penurunan perkembangan mikroorganisme tersebut.
Penambangan  terbuka  sebagai  kegiatan  ekstraksi hasil  bumi  telah  mengakibatkan  degradasi  lahan  secara fisik,  kimia,  dan  biologi  (Munawaroh et  al. 2020). Kerusakan  tersebut  dapat  menekan  perkembangan mikroorganisme di daerah mikorizosfer. Salah satu hasil tambang  yang  sedang  terus  meningkat  permintaannya yaitu  pasir  silika.  Peningkatan  permintaan  pasir  silika, salah  satu  hasil  tambang  sebagai  material  utama  dalam Pembangkit Listrik Tenaga Surya (PLTS) sebagai wujud pencapaian energi baru terbarukan (EBT) (Fatmawati et al. 2020).  Peningkatan  permintaan  ini  menimbulkan kebutuhan  untuk  mengembalikan  lahan  pascatambang pasir  silika  yang  terdegradasi Namun,  pulihnya  lahan pascatambang  pasir  silika  menjadi  kendala,  dan  perlu dilakukan  upaya  untuk  meningkatkan  kandungan  hara pada lahan tersebut.
Penggunaan pot organik sebagai wadah semai dapat menjadi alternatif untuk menambahkan hara dalam tanah. Pot organik, berbahan dasar organik, dapat menyediakan unsur  hara  yang  beragam  (Budi et  al. 2012).  Proses pembuatan  pot  organik  dengan  ukuran  partikel  yang berbeda  dapat  memengaruhi  porositas,  yang  pada gilirannya dapat mempengaruhi pertumbuhan mikroorganisme dalam tanah (Nurwidyanto et al. 2006; Hartanto et al. 2022).
Jenis tanaman yang dipilih  harus dapat  beradaptasi dengan  kondisi  yang  ekstrim  dari  lahan  pascatambang pasir  silika  menjadi  penting.  Mahoni  ( Swietenia macrophylla King.)  dipilih  karena  potensinya  untuk beradaptasi  dengan  kondisi  tanah  dan  iklim  yang beragam (Ambardini et al. 2018).
Penelitian  mengenai  populasi  mikoriza  dan  bakteri pada daerah mikorhizosfer mahoni dengan menggunakan pot  organik  sebagai  wadah  semai  belum  dilakukan. Informasi yang tersedia sangat terbatas, dan oleh karena itu,  penelitian  ini  perlu  dilakukan  untuk  menganalisis populasi mikoriza dan bakteri pada daerah mikorhizosfer semai mahoni yang tumbuh di media pascatambang pasir silika dengan berbagai komposisi pot organik dan ukuran bahan pot.

## METODE PENELITIAN

## Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian ini dilakukan dari bulan September 2022 sampai  Februari  2023  di  Rumah  Kaca  Silvikultur  dan Laboratorium  Mikoriza  dan  Teknologi  Peningkatan Kualitas Bibit, Departemen Silvikultur, Fahutan IPB.

## Alat dan Bahan
Alat dan bahan yang digunakan dalam penelitian ini mencakup saringan dengan ukuran 5 mesh dan 10 mesh, pencetak pot organik, saringan bertingkat dengan ukuran 250µm,  125µm,  dan  63µm,  autoklaf,  mikroskop  stereo dan  binokuler,  optilab,  tanah  hasil  pascatambang  pasir silika, bubur koran, cocopeat, kompos, kapur, bibit semai mahoni daun lebar, gandasil D, serta peralatan tulis.

## Prosedur Penelitian

## Persiapan Pot Organik
Bubur  koran,  kompos,  dan  cocopeat  disaring menggunakan  saringan  dengan  ukuran  yang  sesuai dengan  variabel  perlakuan  yang  ditetapkan.  Setelah melalui  proses  penyaringan,  ketiganya  kemudian dicampur  dalam  proporsi  yang  sesuai  dengan  variabel perlakuan  yang  diuji.  Campuran  dari  ketiga  bahan tersebut selanjutnya dicetak dan dibiarkan mengering di bawah  sinar  matahari  hingga  mencapai  tingkat kekeringan yang diinginkan.

## Persiapan Media Tanam
Media  tanam  yang  digunakan  adalah  media pascatambang pasir silika yang diperoleh dari PT Solusi Bangun  Indonesia,  Cibadak.  Media  ini  kemudian menjalani  proses  sterilisasi  menggunakan  autoklaf,  dan setelah itu dicampur dengan kompos sebanyak 10% serta kapur sebanyak 5%.

## Penyapihan Semai dan Pemeliharaan
Tanaman  semai  yang  dipilih  adalah  semai  mahoni daun  lebar  ( S.  macrophylla )  yang  berusia  25  hari, diperoleh dari Pusat Persemaian Modern Rumpin. Proses penyapihan pada semai dilakukan pada sore hari. Selama periode 4 bulan, tanaman semai dipelihara dengan rutin disiram  1-2  kali  sehari  dan  diberikan  pemupukan menggunakan gandasil D.

## Pengambilan Sampel Media, Pot Organik, dan Akar
Pot  organik  dihancurkan  dan  langkah  selanjutnya adalah memisahkan antara akar, media, dan pot organik. Sampel  media  diambil  dari  tiga  titik  rhizosfer  yang berbeda. Sementara itu, sampel pot organik diambil dari beberapa  titik  pot  organik  yang  memiliki  akar  melekat padanya.  Proses  pengambilan  sampel  akar  dilakukan pada beberapa akar sekunder dengan percabangan yang beragam.
Penghitungan Jumlah Spora dan Persentase Kolonisasi FMA
Metode  yang  diterapkan  mengikuti  pendekatan teknik  tuang  saring  basah  sebagaimana  diuraikan  oleh Pacioni  (1992),  yang  kemudian  dilanjutkan  dengan menerapkan  teknik  sentrifugasi  seperti  yang  dijelaskan oleh  Brundrett et  al. (1996).  Untuk  menghitung persentase kolonisasi akar, digunakan rumus yang telah dikembangkan oleh Brundrett et al. (1996):
% Kolonisasi= ∑ bidang pandang yang terkoloni ∑ keseluruhan bidang pandang × 100%
Penghitungan  Jumlah  dan  Karakterisasi  Koloni Bakteri
Pendekatan  yang  diterapkan  untuk  isolasi  bakteri disesuaikan dengan metode teknik pengenceran bertingkat  sebagaimana  dijelaskan  oleh  Wasteson  dan Hornes  (2009),  yang  kemudian  dilanjutkan  dengan penerapan  metode  pour  plate  (metode  tuang)  sesuai dengan metode yang diuraikan oleh Yunita et al. (2015). Untuk  menghitung  jumlah  koloni,  dilakukan  sesuai dengan  metode  penghitungan  yang  dijelaskan  oleh Soesetyaningsih dan Azizah (2020):
Koloni/g= ∑ koloni per cawan ×
1 faktor pengenceran
Karakterisasi morfologi koloni bakteri menurut Pikoli et al. (2020)  meliputi  bentuk  koloni,  tepi  koloni,  elevasi koloni, dan warna koloni bakteri.

## Rancangan Percobaan dan Analisis Data
Penelitian  ini  menggunakan  Rancangan  Acak Lengkap (RAL) dengan dua faktor, yaitu faktor K yang merupakan  komposisi  pot  organik,  dan  faktor  M  yang merupakan  ukuran  bahan  pot.  Faktor  K  memiliki  tiga taraf,  yaitu  K0:  koran  25%  +  kompos  70%  +  cocopeat 5%, K1: koran 50% + kompos 35% + cocopeat 15%, dan K2:  koran  100%  +  kompos  0%  + cocopeat 0%. Sementara itu, faktor M terdiri atas dua taraf, M0: 5 mesh dan  M1:  10  mesh.  Setiap  taraf  pada  faktor  K dikombinasikan dengan taraf dari faktor M, menghasilkan enam kombinasi. Tiap kombinasi diulang sebanyak  tiga  kali,  sehingga  keseluruhan  percobaan membutuhkan  18  unit  pot  organik  dan  semai  mahoni. Analisis data dilakukan dengan menggunakan perangkat lunak Microsoft Excel dan SAS Institute .

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Analisis Ragam
Rekapitulasi data variasi dalam jumlah spora FMA di media tanam dan pot, populasi koloni bakteri di media tanam  dan  pot,  serta  persentase  kolonisasi  akar  pada rhizosfer S. macrophylla yang telah diberikan perlakuan komposisi  pot  organik  dan  ukuran  bahan  pot
menunjukkan adanya pengaruh yang beragam, sebagaimana tercatat dalam Tabel 1.
Hasil  analisis  sidik  ragam  mengungkapkan  bahwa perlakuan tunggal pada komposisi pot organik memiliki pengaruh  signifikan  terhadap  jumlah  spora  FMA  di kedua  media  tersebut,  serta  terhadap  persentase kolonisasi akar. Sementara, pengaruh tunggal dari ukuran bahan  pot  dan  kombinasi  kedua  faktor  perlakuan  tidak memberikan  pengaruh  signifikan  terhadap  seluruh parameter yang diukur. Hal tersebut menunjukkan bahwa perlakuan komposisi pot organik secara tunggal mampu meningkatkan jumlah spora FMA, tetapi tidak memiliki dampak signifikan pada jumlah koloni bakteri.

## Jumlah Spora FMA
Pemberian perlakuan tunggal komposisi pot organik secara  signifikan  memengaruhi  jumlah  spora  FMA, sebagaimana  tercatat  dalam  Tabel  1.  Dampak  dari perlakuan  tunggal  komposisi  pot  organik  terhadap jumlah spora FMA tersebut dapat dilihat pada Gambar 2.
Analisis  data  menunjukkan  bahwa  rata-rata  jumlah spora tertinggi terdapat pada perlakuan K1, baik di media
Tabel 2  Rekapitulasi hasil analisis sidik ragam S. macrophylla No Parameter K M KXM 1 Jumlah Spora FMA pada Media Tanam * tn tn 2 Jumlah Spora FMA pada Pot * tn tn 3 Jumlah Koloni Bakteri pada Media Tanam tn tn tn 4 Jumlah Koloni Bakteri pada Pot tn tn tn 5 Persentase Kolonisasi FMA * tn tn
Keterangan:  K=  Komposisi  pot  organik,  M=  Ukuran saringan;  *=  Berpengaruh  nyata  pada  (P≤0,05),  dan  tn= Tidak berpengaruh nyata pada (P>0,05)
Gambar 2  Perbandingan
rata-rata pengaruh komposisi  pot  organik  terhadap  jumlah spora FMA
Gambar 2  Perbandingan rata-rata pengaruh ukuran bahan pot terhadap jumlah
Tabel  1  Pengaruh  interaksi  perlakuan  terhadap jumlah  spora  FMA  pada  semai  S .
macrophylla Perlakuan Rata-rata Media Tanam Pot K0M0 41 ± 8,89 14 ± 11,36 K0M1 27,67 ± 24,11 3,67 ± 2,31 K1M0 146,67 ± 75,51 22,33 ± 2,52 K1M1 155 ± 53,70 17 ± 7,55 K2M0 63 ± 26,29 12 ± 7,94 K2M1 93,67 ± 32,19 14,33 ± 2,08
tanam maupun di pot, masing-masing sebanyak 151 dan 20.  Sebaliknya,  rata-rata  jumlah  spora  terendah  tercatat pada  perlakuan  K0,  dengan  jumlah  berturut-turut sebanyak  34  dan  9.  Fenomena  ini  dikaitkan  dengan kandungan  kompos  yang  paling  tinggi  pada  perlakuan K0  dibandingkan  dengan  perlakuan  lainnya.  Menurut Yuniwati et  al. (2012),  kompos  memiliki  kandungan unsur  hara  makro  dan  mikro  yang  lengkap,  yang  dapat mendukung  pertumbuhan  mikoriza.  Mikoriza,  pada gilirannya,  cenderung  membentuk  spora  lebih  banyak ketika kondisi lingkungan tertekan.
Pengaruh  perlakuan  tunggal  ukuran  bahan  pot, berdasarkan  analisis  sidik  ragam  (Tabel  1),  tidak menunjukkan dampak yang signifikan terhadap keberadaan mikoriza. Perhitungan rata-rata jumlah spora FMA,  seperti  yang  tergambar  dalam  Gambar  2, memperlihatkan bahwa rata-rata jumlah spora tertinggi di media tanam  terdapat  pada perlakuan M1  sebanyak 92, sedangkan  di  pot,  rata-rata  tertinggi  terdapat  pada perlakuan  M0  sebanyak  16.  Hasil  ini  sejalan  dengan penelitian  Gaur  dan  Adholeya  (2000),  yang  tidak menemukan  korelasi  antara  jumlah  spora  FMA  dengan ukuran partikel tanah.
Kombinasi  dua  faktor  perlakuan,  yakni  komposisi dan  ukuran  bahan  pot,  tidak  menunjukkan  pengaruh signifikan  terhadap  jumlah  spora  FMA  (Tabel  1). Perhitungan rata-rata jumlah spora pada setiap perlakuan (Tabel 2) menunjukkan variasi yang signifikan.
Rata-rata  jumlah  spora  terbanyak  di  media  tanam terdapat pada perlakuan K1M1 sebanyak 155, sedangkan di pot, rata-rata tertinggi terdapat pada perlakuan K1M0 sebanyak  22,33.  Sementara  itu,  rata-rata  jumlah  spora terendah,  baik  di  media  tanam  maupun  di  pot,  terdapat pada  perlakuan  K0M1,  dengan  jumlah  berturut-turut sebanyak 27,67 dan 3,67. Varian ini diduga disebabkan oleh  kondisi  lingkungan  pada  perlakuan  K1M0  dan K1M1 yang lebih sesuai, optimal, dan kompatibel dalam mendukung  pertumbuhan  dan  perkembangan  spora (Puspitasari et  al. 2012).  Uji  korelasi  Pearson  antara jumlah  spora  FMA  di  media  tanam  dan  di  pot, sebagaimana tertera pada Tabel 3, menunjukkan korelasi yang lemah sebesar 0,381. Meskipun nilai korelasi relatif rendah, tetapi bersifat positif.

## Kolonisasi FMA pada Perakaran Bibit
Rekapitulasi hasil sidik ragam (Tabel 1) menunjukkan bahwa tidak terdapat  pengaruh signifikan dari  kombinasi  perlakuan  antara  komposisi  dan  ukuran bahan  pot  terhadap  persentase  kolonisasi  akar.  Analisis perhitungan  persentase  kolonisasi  akar  memperlihatkan variasi hasil pada setiap perlakuan (Tabel 4).
Hasil  analisis  persentase  kolonisasi  menunjukkan variasi dari tingkat rendah hingga sangat tinggi. Rata-rata persentase  kolonisasi  tertinggi  tercatat  pada  perlakuan
K1M0,  mencapai  80%,  yang  termasuk  dalam  kelas  V atau  sangat  tinggi.  Temuan  ini  sejalan  dengan  hasil jumlah  spora  FMA  yang  tinggi  pada  perlakuan  yang sama, baik  di  media tanam  maupun di  pot.  Di sisi lain, rata-rata persentase kolonisasi terendah ditemukan pada perlakuan  K0M1,  mencapai  20%,  yang  masuk  dalam kelas  II  atau  rendah.  Hasil  ini  juga  konsisten  dengan jumlah  spora  FMA  yang  rendah  pada  perlakuan  yang sama di kedua lingkungan tanam. Kesimpulan yang dapat diambil  adalah  bahwa  jumlah  spora  FMA  berkorelasi positif  dengan  persentase  kolonisasi  akar,  yang  berarti semakin tinggi jumlah spora FMA, persentase kolonisasi akar  juga  meningkat,  dan  sebaliknya,  semakin  sedikit jumlah spora FMA, persentase kolonisasi akar cenderung menurun. Temuan ini sesuai dengan penelitian Nurbaity et  al. (2011),  yang  menunjukkan  bahwa  penambahan spora  FMA  meningkatkan  persentase  kolonisasi  akar. Oleh  karena  itu,  dapat  disimpulkan  bahwa  aktivitas mikoriza  dalam  menginfeksi  akar  dan  meningkatkan serapan  air  dan  unsur  hara  dapat  tercermin  dari peningkatan  persentase  kolonisasi  akar  seiring  dengan peningkatan  jumlah  spora  FMA,  sebagaimana  juga diamati  dalam  penelitian  Sanggilora et  al. (2019)  yang menunjukkan  bahwa  peningkatan  dosis  mikoriza  dapat meningkatkan persentase infeksi.
Pengamatan mikroskopis (Gambar 3) menunjukkan adanya  struktur-struktur  seperti  hifa  ekstraseluler,  hifa intraseluler, vesikula, dan arbuskula pada akar tanaman S.  macrophylla.  Keberadaan  struktur-struktur  FMA  ini mengindikasikan  bahwa  akar  tanaman  telah  terinfeksi
Tabel 4  Korelasi jumlah spora FMA di media tanam
dengan di pot Parameter Nilai Korelasi pearson 0,381 l Signifikansi 0,119 Keterangan: l: lemah (0,20-0,399)
Sumber: Tyastirin dan Hidayati 2017)
Tabel  3  Pengaruh  interaksi  perlakuan  terhadap persentase kolonisasi FMA pada semai S. macrophylla Perlakuan Rata-rata (%) K0M0 33 s K0M1 20 r K1M0 80 st K1M1 60 t K2M0 33 s K2M1 43 s
Keterangan:  r:  rendah  (6-25%),  s:  sedang  (26-50),  st: sangat tinggi (76-100%) Sumber: Rajapakse dan Miller (1992)
Gambar  3  Struktur  FMA  pada  akar  tanaman S. macrophylla . (A) Hifa intraseluler, (B) Hifa  ekstraseluler,  (C)  Arbuskula,  (D) Vesikula (perbesaran 10×)
oleh FMA. Hasil uji korelasi Pearson antara jumlah spora dan  persentase  kolonisasi  FMA,  baik  di  media  tanam maupun  di  pot  (Tabel  5),  menunjukkan  nilai  korelasi yang cukup dan bersifat positif.

## Jumlah Populasi Koloni Bakteri
Hasil rekapitulasi sidik ragam (Tabel 1) menegaskan bahwa  tidak  ada  pengaruh  yang  signifikan  dari kombinasi perlakuan antara komposisi dan ukuran bahan pot terhadap jumlah populasi koloni bakteri. Perhitungan rata-rata populasi koloni bakteri  pada media tanam  dan pot dijabarkan dalam Tabel 6.
Rata-rata populasi koloni bakteri tertinggi di media tanam terdapat pada perlakuan K1M0, mencapai 164,14; sementara itu, rata-rata jumlah koloni bakteri tertinggi di pot tercatat pada perlakuan K0M1, yaitu sebanyak 128. Di sisi lain, rata-rata populasi koloni bakteri terendah di media  tanam  terdapat  pada  perlakuan  K2M1  sebanyak 22,10; sedangkan di pot, rata-rata jumlah koloni bakteri terendah  terdapat  pada  perlakuan  K1M1,  sebanyak 42,13.  Varian  ini  dapat  dipengaruhi  oleh  faktor lingkungan,  termasuk  ketersediaan  hara,  sebagaimana diindikasikan oleh Hanafiah dan Kemas (2012). Dengan demikian, kondisi lingkungan pada perlakuan K1M0 dan K0M1  mungkin  lebih  mendukung  pertumbuhan  dan perkembangan koloni bakteri.
Rekapitulasi  sidik  ragam  (Tabel  1)  menunjukkan bahwa  perlakuan  tunggal  komposisi  pot  organik  tidak memiliki  dampak  yang  signifikan  terhadap  jumlah populasi koloni bakteri, baik di media tanam maupun di pot.  Hasil  perhitungan  rata-rata  jumlah  populasi  koloni bakteri  diilustrasikan  dalam  Gambar  4.  Berdasarkan Gambar  4,  rata-rata  jumlah  populasi  koloni  bakteri tertinggi  di  media  tanam  terdapat  pada  perlakuan  K1, sementara  di  pot,  jumlah  tertinggi  terdapat  pada perlakuan  K0.  Hal  ini  mungkin  disebabkan  oleh  dosis kompos  yang  paling  tinggi  pada  perlakuan  K0,  yakni sebanyak 70%, dibandingkan dengan perlakuan lainnya. Hasil penelitian Lyimo et al. (2012) menunjukkan bahwa pemberian kompos unggas dan sapi dapat meningkatkan pH  tanah,  yang  menguntungkan  untuk  pertumbuhan
bakteri  karena  bakteri  cenderung  berlimpah  pada  pH tanah  yang  bersifat  basa  netral  (Sari  2015).  Rata-rata populasi  koloni  bakteri  terendah,  baik  di  media  tanam maupun di pot, terdapat pada perlakuan yang sama, yaitu K2,  berturut-turut  sebanyak  25  dan  78.  Perlakuan  K2, yang  tidak  mengandung  kompos  dan  cocopeat,  diduga dapat menekan pertumbuhan bakteri karena kedua bahan tersebut  berkontribusi  pada  peningkatan  ketersediaan hara dalam tanah (Waskito et al. 2022).
Pengaruh  perlakuan  tunggal  ukuran  bahan  pot terhadap  populasi  koloni  bakteri,  baik  di  media  tanam maupun  di  pot,  menunjukkan  dampak  yang  tidak signifikan  (Tabel  1).  Rata-rata  populasi  koloni  bakteri pada setiap taraf perlakuan diilustrasikan dalam Gambar 5.  Hasil  perhitungan  menunjukkan  bahwa  rata-rata jumlah populasi koloni bakteri pada perlakuan M1, baik di media tanam maupun di pot, sama dan mencapai 73. Di  sisi  lain,  rata-rata  jumlah  populasi  koloni  bakteri tertinggi di pot tercatat pada perlakuan M0 sebanyak 103. Oleh  karena  itu,  semakin  kecil  ukuran  bahan  pot, semakin sedikit populasi koloni bakteri yang ditemukan. Temuan ini sesuai dengan penelitian Chau et al. (2011), yang  menyatakan  bahwa  struktur  tanah  yang  semakin kecil dapat menghambat kolonisasi dan mobilitas bakteri dalam tanah karena tanah menjadi semakin lengket dan padat.
Hasil  uji  korelasi  Pearson  antara  jumlah  populasi koloni  bakteri  di  media  tanam  dan  di  pot,  seperti  yang tertera pada Tabel 7, menunjukkan korelasi yang lemah dengan nilai sebesar 0,028 dan bersifat negatif. Korelasi negatif  ini  dapat  diinterpretasikan  sebagai  adanya hubungan  yang  berlawanan  arah  menurut  Tyastirin  dan Hidayati  (2017).  Korelasi  antara  jumlah  spora  FMA  di
Gambar 4  Perbandingan rata-rata pengaruh komposisi pot organik terhadap populasi
koloni bakteri
Gambar 5  Perbandingan  rata-rata  pengaruh  ukuran bahan  pot  terhadap  populasi  koloni bakteri
Tabel  5  Korelasi  jumlah  spora  FMA  dengan persentase kolonisasi FMA Parameter Nilai Media Pot Korelasi pearson 0,591 c 0,536 c Signifikansi 0,010 0,022 Keterangan: c: cukup (0,40-0,599) Sumber: Tyastirin dan Hidayati 2017)
Tabel  6  Pengaruh  interaksi  perlakuan  terhadap jumlah  koloni  bakteri  pada  semai S.
macrophylla Perlakuan Rata-rata Media Tanam Pot K0M0 24,83 ± 15,20 91,83 ± 73,94 K0M1 90,30 ±72,59 128 ± 120 K1M0 164,14 ± 150,47 114 ± 161,69 K1M1 107,94 ± 166,68 42,13 ± 27,62 K2M0 28,55 ± 47,16 102,67 ± 53,30 K2M1 22,10 ± 24,18 53,15 ± 83,98
media  tanam  dengan  bakteri  di  media  tanam  yang disajikan  pada  Tabel  8  memiliki  nilai  yang  tergolong sangat lemah dengan nilai sebesar 0,135 dan berkorelasi negatif.  Nilai  korelasi  antara  jumlah  spora  FMA  di  pot dengan  bakteri  di  pot  seperti  pada  Tabel  9  tergolong lemah sebesar 0,204 dengan korelasi yang negatif. Hasil yang  lemah  tersebut  menurut  Permana  (2022) menunjukkan  bahwa  setiap  peningkatan  jumlah  spora FMA tidak memiliki pengaruh yang signifikan terhadap peningkatan  jumlah  populasi  koloni  bakteri.  Namun karena  hasilnya  berkorelasi  negatif  berarti  setiap peningkatan  jumlah  spora  FMA  terjadi  penurunan jumlah  populasi  koloni  bakteri  yang  tidak  signifikan. Nilai  yang  berkorelasi  negatif  tersebut  dapat  terjadi karena  kepadatan  spora  tidak  mempengaruhi  populasi bakteri (Rahman et al. 2019).

## Karakterisasi Bakteri
Karakterisasi bakteri dapat dilihat melalui morfologi koloninya  dan  koloni  bakteri  mewakili  biakan  dari bakteri.  Morfologi  koloni  tersebut  diamati  secara langsung yang meliputi bentuk, tepi, elevasi, dan warna
(Pikoli et al. 2020). Hasil pengamatan morfologi koloni bakteri pada penelitian ini disajikan dalam Tabel 10.
Hasil  pengamatan  menunjukkan  bahwa  terdapat  7 karakter  mofologi  koloni  yang  berbeda.  Bentuk,  tepi, elevasi,  dan  warna  koloni  yang  mendominasi  berturut- turut  bundar,  berbenang,  rata,  dan  berwarna  putih.  Hal tersebut  selaras  dengan  penelitian  Jufri  (2017)  bahwa morfologi  koloni  bakteri  rhizosfer  yang  ditemukan didominasi  dengan  bentuk  bulat  dan  berwarna  putih. Berdasarkan karakterisasi morfologi koloni bakteri yang ditemukan  diduga  jenis  bakteri  tersebut  berturut-turut adalah Bacillus  brevis,  Staphylococcu s  sp., Bacillus subtilis, Aeromononas schubertii, Klebsiella sp., Sarcina sp., dan Bifidobacterium spp. (Budi dan May 2013; Putri 2019;  Diarti et  al. 2017;  Utami 2017;  Putri 2022). Dua dari  koloni  bakteri  yang  ditemukan  diduga  berasal  dari kelompok Bacillus ,  hal  tersebut  sejalan  dengan pernyataan  Laila  (2018)  bahwa  kelompok  bakteri  yang banyak ditemukan di rhizosfer salah satunya adalah dari kelompok Bacillus.

## SIMPULAN DAN SARAN

## Simpulan
Komposisi  pot  organik  mampu  meningkatkan keberadaan  spora  FMA.  Komposisi  pot  organik  50% koran,  35%  kompos,  dan  15% cocopeat menunjukkan hasil  terbaik  untuk  perkembangan  spora  FMAa  dan koloni bakteri,  perkembangan spora  FMA dan populasi koloni  bakteri  dalam  media  tanam  lebih  baik dibandingkan  dengan  perkembangan  spora  FMA  dan koloni bakteri dalam pot organik. Ukuran bahan pot tidak mampu mempengaruhi keberadaan spora FMA maupun populasi koloni bakteri. Kombinasi perlakuan komposisi pot  dan  ukuran  bahan  pot  juga  tidak  mampu mempengaruhi  keberadaan  spora  FMA  dan  populasi koloni bakteri. Terdapat tujuh karakter morfologi koloni bakteri berbeda yang didominasi oleh bundar, berbenang, rata, dan berwarna putih.

## Saran
Pot organik dapat menjadi pilihan untuk mengurangi penumpukan  sampah polybag dan  dapat  meningkatkan kesuburan  tanaman.  Perlu  dilakukan  penelitian  lebih lanjut mengenai komposisi pot organik yang tepat guna meningkatkan  mikroorganisme  di  daerah  rhizosfer. Identifikasi  spora  FMA  dan  bakteri  sampai  tingkat spesies  juga  perlu  dilakukan  untuk  mengetahui  potensi pemanfaatannya bagi tanaman.

## DAFTAR PUSTAKA
Ambardini  S,  Ningsih  R,  Kali  YR.  2018.  Pertumbuhan dan  alokasi  biomassa  organ  tanaman  mahoni ( Swietenia mahagoni L .) yang ditanam pada tanah bekas  tambang  emas  dengan  perlakuan  pupuk kandang. Jurnal Bionature . 19(1):8-14.
Brundrett MC, Bougher N, Dells B, Grove T, Malajozuk N. 1996. W orking with Mychorrizal Forestry and
Tabel  7  Korelasi  jumlah  populasi  koloni  bakteri  di
media tanam dengan di pot Parameter Nilai Korelasi pearson -0,228 l Signifikansi 0,362 Keterangan: l: lemah (0,20-0,399) Sumber: Tyastirin dan Hidayati (2017) Tabel 8 Korelasi jumlah spora FMA di media tanam dengan bakteri di media tanam Parameter Nilai Korelasi pearson -0,135 sl Signifikansi 0,594 Keterangan: sl: sangat lemah (0,00-0,199) Sumber: Tyastirin dan Hidayati (2017) Tabel  9  Korelasi  jumlah  spora  FMA  di  pot  dengan bakteri di pot Parameter Nilai Korelasi pearson -0,204 l Signifikansi 0,416 Keterangan: l: lemah (0,20-0,399) Sumber: Tyastirin dan Hidayati (2017)
Tabel  10  Karakterisasi  morfologi  bakteri  pada rhizosfer semai S. macrophylla No. Bentuk Koloni Tepi Koloni Elevasi Koloni Warna 1 Bundar Berbenang Timbul Putih 2 Bundar Berbenang Cembung Putih 3 Bundar Berbenang Rata Putih 4 Bundar Licin Cembung Putih kekuningan 5 Tidak berpola Ber- gelombang Rata Putih 6 Tidak berpola Berbenang Rata Putih 7 Lensa Licin Rata Putih
Agriculture .  Canberra:  Australian  Centre  for International Agricultural Research.
Budi  SW,  May  NL.  2013.  Bacteria  from  arbuscular mychorrhizal  fungi  spores Gigaspora sp.  and
Glomus sp.:  their  antagonistic  effects  towards soilborne fungal pathogens and growth stimulation of Gigaspora sp. in vitro. BIOTROPIA . 20(1):38-49.
Budi SW, Sukendro A, Karlinasari L. 2012. Penggunaan pot  berbahan  dasar  organik  untuk  pembibitan Gmelina arborea Rob. di Persemaian. Indonesia J Agron . 40(3):239-245.
Chau JF, Bagtzozlou AC, Wilig MR. 2011. The effect of oil  textureon  richness  and  diversity  of  bacterial community. Environ Forensic . 12:333-341. Diarti MW, Rohmi, Achmad YSK, Jiwintarum Y. 2017. Karakteristik  morfologi,  koloni  dan  biokimia bakteri  yang  diisolasi  dari  sedimen  laguna perindukan  nyamuk. Jurnal  Kesehatan  Prima. 11(2):124-136.
Fatmawati LI, Latif A, Nanda FS. 2020. Studi ekstraksi silicon dari pasir silika Indonesia dengan metode metalotermik. Prosiding  TPT  XXIX  PERHAPI 2020 .
Gaur A, Adholeya A. 2000. Effects of the particle size of soil-less  substrates  upon  AM  fungus  inoculum production. Mycorrhiza . 10:43-48.
Guckert FM, Chavanon M, Morel JL, Villemin G. 1991. Root  Exudation  in  Beta  vulgaris:  A  Comparizon with  Zea  mays  in  Plant  Roots  and  their Environment. New  York:  Elsevier  Scintific Publishong.
Hanafiah,  Kemas  A.  2012. Dasar-Dasar  Ilmu  Tanah . Jakarta:PT Raja Grafindo Persada.
Hartanto N, Zulkarnain, Wicaksono AA. 2022. Analisis beberapa  sifat  fisik  tanah  sebagao  indicator kerusakan  tanah  pada  lahan  kering. Jurnal Agroekoteknologi Tropika Lembab . 4(2):107-112. Jufri  SW.  2017.  Identifikasi  dan  karakterisasi  mikroba rhizosfer  pada  hutan  rakyat  tanaman  bitti  ( Vitex cofassus Reinw), jati ( Tectona grandis ), dan jabon merah  ( Anthocephalus  macropyllus )  [skripsi]. Makassar: Universitas Hasanuddin.
Laila RR. 2018. Diversitas dan potensi bakteri produksi IAA  rhizosfer Pinus sp.  dari  Hutan  Universitas Brawijaya  Kabupaten  Malang  [skripsi].  Malang: Universitas Brawijaya.
Lyimo  HJF,  Pratt  RC,  Mnyuku  RSOW.  2012. Composted  cattle  and  poultry  manures  provide excellent  fertility  and  improved  management  of gray spot in maize. Field Crops Research. 126 :97- 103.
Munawaroh K, Budi SW, Pamoengkas P. 2020. Aplikasi amelioran  tanah  dan  mycosilvi  pada Falcataria sp. dan Ochroma bicolor Rowlee. untuk reklamasi lahan pascatambang pasir silika. JIPI . 25(3):334- 341.
Nurbaity A, Sunarto T, Hindersah R, Solihin A, Kalay M. 2011. Fungi mikoriza arbuskula asal Pangalengan Jawa  Barat  sebagai  agens  hayati  pengendali nematode  sista  kentang. Jurnal  Agrotropika . 16(2):57-61.
Nurwidyanto  MI,  Yustiana  M,  Widada  S.  2006. Pengaruh  ukuran  butir  terhadap  porositas  dan permeabilitas  pada  batupasir. Berkala  Fisika . 9(4):191-195.
Pacioni G. 1992. Wet-sieving and decanting techniques for  extraction  of  spores  of  vesicular-arbuscular fungi. Journal  of  Methods  in  Microbiology. 24:317-332.
Permana  SP.  2022.  Peran  mikoriza  arbuskula  dan amelioran  tanah  terhadap  bakteri  pada  rhizosfer sengon  laut  di  media  pascatambang  batu  bara [skripsi]. Bogor: Institut Pertanian Bogor.
Pikoli MR, Rahmah FA, Sari AF, Asturi P, Solihat NA. 2020. Memancing Mikroba dari Sampah:  Isolasi Mikroorganisme  Pendegradasi  Mikoplastik  dari Tempat Pembungan Akhir (TPA) Sampah. Depok: Kinzamedia Rizfa Aksara.
Puspitasari  D,  Indah  K,  Anton  H.  2012.  Eksplorasi
vesicular arbuscular mycorrhiza (VAM)
indigenous pada  lahan  jagung  sampan  Madura.
Jurnal Sains dan Seni. 1(2):19-22.
Putri  RA.  2019.  Uji  hipersensitif  bakteri  endofit  pada akar  tanaman  kaktus  ( Cereus  repandus MILL.) terhadap pertumbuhan tanaman tomat ( Lycopersicum esculentum MILL.) sebagai penuntun praktikum mikrobiologi terapan [tesis]. Jambi: Universitas Jambi.
Putri  AS.  2022.  Keragaman  bakteri  yang  berpotensi dalam  mendegradasi  mikroplastik  di  TPA Piyungan,  Bantul,  DIY  [skripsi].  Yogyakarta: Universitas Islam Indonesia.
Rajapakse  S,  Miller  JJC.  1992.  Methods  for  studying vesicular arbuscular mychorrizal root colonization and  related  root  physical  properties. Journal  of Methods in Microbiology. 24:302-316.
Rahman MA, Nurbaity A, Simarmata T. 2019. Inokulasi fungi  mikoriza  arbuskula  (FMA)  meningkatkan populasi bakteri pelarut fosfat dan serapan hara P tanaman  cabai  ( Capsicum  annuum L.)  pada inceptisol. Jurnal Agrotek Indonesia . 4(1):30-32. Rao NS. 1994. Mikroorganisme Tanah dan Pertumbuhan Tanaman . Jakarta:UI Press. Sari DS. 2015. Isolasi dan identifikasi bakteri tanah yang terdapat  di  sekitar  perakaran  tanaman. Bio-site . 1(1):21-27.
Soesetyaningsih  E,  Azizah.  2020.  Akurasi  perhitungan bakteri  pada  daging  sapi  menggunakan  metode hitung cawan. BST. 8(3):75-79.
Sylvia  D,  Fuhrmann  J,  Hartel  P,  Zuberer  D.  2005.
Principles and Applications of Soil Microbiology . New Jersey: Pearson Education Inc.
Tyastirin E, Hidayati I. 2017. Statistik Parametrik untuk Penelitian  Kesehatan. Surabaya:  Program  Studi Arsitektur UIN Sunan Ampel.
Utami  RE.  2017. Skrinning bakteri  dari  tandan  kosong kelapa sawit (TKKS) yang berasal dari PT. Sungai Bahar  Pasifik  Utama  Maro  Sebo  Kabupaten Muaro Jambi sebagai bahan pengayaan praktikum mikrobiologi [skripsi]. Jambi: Universitas Jambi.
Waskito H, Purwanti EW, Sa’diyyah I, Budianto. 2022.
Pengaruh  interval  pemberian  konsorsium  bakteri endofit  dan  jenis  pupuk  kandang  terhadap
pertumbuhan  dan  produksi  jagung  manis. Jurnal
Triton . 13(1):37-42.
Wasteson  Y,  Hornes  E.  2009.  Pathogenic Escherichia Coli Found in Food. International Journal of Food Microbiology . 12:103-114.
Yunita M, Hendrawan Y, Yulianingsih R. 2015. Analisis kuantitatif mikrobiologi pada makanan
penerbangan  ( Aerofood  ACS )  Garuda  Indonesia berdasarkan  TPC  ( total  plate  count )  dengan metode pour plate . JKPTB. 3(3):237-248.
Yuniwati M, Iskarima F, Padulemba A. 2012. Optimasi kondisi  proses  pembuatan  kompos  dari  sampah organik  dengan  cara  fermentasi  menggunakan EM4. Jurtek . 5(2):172-181.