Uji Efektifitas Jamur Antagonis Dalam Pengendalian Jamur Colletotrichum Pada Tanaman Tomat ( Lycopersicum esculentum L. ). Secara In Vitro
Test Of The Effectiveness Of Antagonistic Fungi In The Control Of Colletotrichum Mushrooms In Tomato Plants (Lycopersicum esculentum L.). In Vitro
Sopialena 1 , Alexander Mirza 1 dan Sri Muji Pratiwi 1
1 ) Agroekoteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Mulawarman, Jalan Pasir Balengkong Kampus Gunung Kelua, Universitas Mulawarman, Samarinda, Kalimantan Timur, Indonesia. email : Sopialena88@gmail.com
Diterima : 25 Agustus 2020 Disetujui : 31 Agustus 2020

## ABSTRACT
This study  was  conducted  to  test  the  effectiveness  of  several  antagonistic  fungi  (Trichoderma  sp.,  Penicillium  sp., Gliocladium sp., And Rhizopus sp) in controlling the pathogenic Colletotrichumsp. fungi from tomato plants (Lycopersicon esculentum  L.).  in  vitro.  The  research  was  carried  out  for  2  (two)  months  at  the  Laboratory  of  Pest  and  Plant  Disease Laboratory, Faculty of Agriculture, Mulawarman University. This research was compiled using a Completely Randomized Design (CRD) consisting of 4 (four) treatments, namely Trichoderma sp., Penicillium sp., Gliocladium sp., And Rhizopus sp. Each treatment was repeated 10 times. Data analysis using Analysis of variance and if the results are obtained significantly different then further tested using the Least Significant Difference. The results showed that the most effective antagonistic fungus suppressed the growth of the pathogen Colletotrichum sp. is Gliocladium sp. and Trichoderma sp., meanwhile the antagonist fungus Rhizopus sp., which is less effective in suppressing the growth of the fungus Colletotrichum sp., and the fungus Penicillium sp., are the most ineffective fungi in suppressing the growth of the pathogenic Colletotrichum sp.
Keywords : Trichoderma sp., Penicillium sp., Gliocladium sp., And Rhizopus sp., Colletotrichum sp., Tomatoes (Lycopersicon esculentum L.)

## PENDAHULUAN
Tomat ( Lycopersicon esculentum L.)
merupakan  komoditas  sayuran  yang  sangat  penting bagi masyarakat karena memiliki nilai ekonomi yang cukup  baik.  Tomat  memiliki  manfaat  yang  tinggi pada  kehidupan  manusia  sehingga  tingginya permintaan  terhadap  tomat  itu  sendiri  sehingga peluang  pasarnya  terbuka secara  luas, baik  peluang pasar  dalam  negri  maupun  untuk  tujuan  ekspor. Manfaat tomat ini sangat memberikan peluang untuk petani  membudidayakan  tanaman  tomat  sebagai sumber  penghasilan.  Salah  satu  kegunaan  tomat sebagai  bahan  masakan.  Hampir  semua  jenis masakan  di  indonesia  menggunakan  tomat  sebagai bahan campuran pembuatannya. Tomat juga banyak mengandung  gizi  yang  sangaat  bermanfaat  bagi tubuh manusia. Komponen utamanya berupa vitamin A,C,dan  D  serta  banyak  menggandung  serat.  Pada bidang  kesehatan  manfaat  tomat  aalah  sebagai pencegah penyakit sariawan, menghilangkan jerawat dan mencegah penyakit kanker (Iswari 2015) selain itu,  tomat  juga  menjadi  tanaman  unggulan  nasional komoditas  hortikultura  dan  prioritas  utama  pada sejumlah provinsi di indonesia. Namun, produktifitas tomat di indonesia masih relatif rendah yaitu 16,61  ton/ha pada tahun 2013 dan mengalami penurunan  pada  tahun  2014  sebanyak  15,96  ton/ha (Kementerian Pertanian 2014).
Penyakit  antraknosa  merupakan  salah  satu penyakit  yang  sangat  merugikan  terutama  pada musim  hujan.  Hal  ini  terutama  disebabkan perkecambahan  konidia Colletotrichum sp.  dan keparahan  penyakit  antraknosa  sangat  dipengaruhi oleh  kelembaban  udara  yang  tinggi.  Penyakit antraknosa ini kurang dijumpai pada musim kemarau atau  di  lahan  yang  mempunyai  drainase  dan  gulma yang terkendali dengan baik (Hersanti, Krestini, and Fathin 2016). Kehilangan hasil dari lapangan akibat penyakit  antraknosa  pada  musim  hujan  mencapai 80%,  sedangkan  pada  musim  kemarau  berkisar 20- 35%. Para petani biasanya melakukan pengendalian penyakit  antraknosa  dengan  cara  penyemrotan pestisida  kimia  yang  akan  memberikan  dampak negatif bagi tanaman dan lingkungan.

## BAHAN DAN METODE
Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini yaitu:  media  PDA,  tanaman  tomat  yang  bergejala, alkohol  70%,  aquades,  spirtus  dan methiline  blue. Alat  yang  digunakan  penelitian  ini  adalah mikroskop, haemocytometer, cawan  petri,  tabung erlenmeyer,  cover  glass ,  gelas  ukur,  jarum  oase, pinset,  lampu  bunsen, hand  sprayer,  autoclave , kamera,  kapas, alumunium  foil , entkas ,  inkubator, plastik cling wrap , timbangan, opti lab , dan alat tulis.

## Waktu dan Tempat
Penelitian  ini  dilaksanakan  2  bulan,  sejak  Juni sampai  dengan  Agustus  2020  terhitung  mulai persiapan  penelitian  hingga  pengambilan  data terakhir. Tempat penelitian berlokasi di Laboratorium  Ilmu  Hama  dan  Penyakit  Tumbuhan Gedung  Laboratorium  Terpadu  Fakultas  Pertanian Universitas  Mulawarman.  Pengambilan  tanaman bergejala  berlokasi  di  Desa  Purwajaya    Kecamatan Loa Janan  Kabupaten  Kutai  Kartanegara.

## Rancangan Penelitian
Penelitian  menggunakan  4  perlakuan  dan masing-masing  10  ulangan,  terdiri  dari  P1=Jamur Tricoderma  sp vs  Jamur Collectotrichum  sp. ,  P2= Jamur Penicillium sp vs Jamur Collectotrichum sp., P3= Jamur Gliocladium sp vs Jamur Collectotrichum sp. , P4= Jamur Rhizopus sp vs Jamur Colletotrichum sp
Pengambilan  sampel  untuk  Jamur  patogen penyebab  penyakit  dilakukan  pada  tanaman  yang memperlihatkan  gejala  penyakit  yang  disebabkan oleh Jamur Colletotrichum sp. Pengambilan sampel diambil pada bagian tanaman yang terserang dengan cara  memotong  bagian  tanaman  yang  terserang penyakit,  kemudian  dibawa  ke  laboratorium  untuk diisolasi, dimurnikan dan dilakukan uji antagonis.
Isolasi Jamur Collectotrichum sp.
Isolasi  patogen  penyebab  penyakit  pada  tomat yang  menunjukan  gejala  penyakit  yang  disebabkan oleh Jamur di lapangan. Kemudian dipotong persegi empat yang yang terdiri dari jaringan yang sakit dan jaringan yang sehat dengan ukuran kurang lebih 1 x 1  cm.  Kemudian  potongan  tersebut  dibersihkan dengan  alkohol  70%  dengan  cara  dicelupkan  ke dalam  alkohol  kemudian  dibilas  dengan  air  dan  di keringkan diatas kertas bersih. Selanjutnya dimasukan  kedalam  cawan  perti  yang  telah  berisi media PDA. Kegiatan isolasi ini dilakukan di dalam entkas. Cawan petri dibungkus dengan kertas untuk mencegah terjadinya kontaminasi kemudian diinkubasi  dalam  inkubator.  Pengamatan  dilakukan 5 hari setelah isolasi.
Pemurnian Jamur Collectotrichum sp.
Pemurnian  jamur  di  lakukan  dari  hasil  isolasi jamuryang  telah  di  lakukan  sebelumnya.  Setelah melakukan  isolasi,  pada  media  PDA  akan  tumbuh hifa-hifa dari jamur tersebut, kemudian ambil bagian dari spora menggunakan jarum ose dan diletakan ke dalam cawan petri yang berisi media PDA yang baru. Cawan petri dibungkus dengan plastik cling wrap.

## Uji Efektifitas
Percobaan di laboratorium dilakukan pengujian adalah meletakkan masing-masing isolat jamurantagonis  dan Collectotrichum sp.secara berpasangan  yaitu  dengan  cara  biakan  isolat  jamur antagonis. dan jamur patogen yang telah dimurnikan diletakkan  pada  media  PDA  dalam  cawan  petri. Pengamatan  dilakukan  pada  4-7  hari  setelah  isolasi dengan  pengukuran  daya    hambatan  pertumbuhan jamur  tersebut,  kemudian  dihitung  persentase penghambatnya.
𝑙 = 𝑟1 − 𝑟2 𝑟1 𝑥 100%
Keterangan :
l = Presentase penghambatan r1 = Jari-jari koloni B (patogen) yang tumbuh ke arah berlawanan dengan antagonis A (antagonis) r2 = Jari-jari koloni B yang tumbuh ke arah antagonis A

## Pengambilan Data
Data  yang  diambil  adalah  hasil  isolasi  dan identifikasi  dari  penelitian  yang  telah  dilakukan dengan  cara  mengamati  ciri-ciri  khusus  yang dimiliki  oleh  jamur  patogen  seperti  warna  koloni, jenis hifa (bersekat atau tidak bersekat), bentuk hifa, bentuk spora/konidia, ukuran spora/konidia, kecepatan  tumbuh  koloni  dan  kerapatan  spora. Pengambilan  data  untuk  jamurAntagonis.  yaitu warna  koloni,  bentuk  spora/konidia,  kecepatan tumbuh koloni dan kerapatan spora.

## Kerapatan Spora
Kerapatan spora dihitung dengan menggunakan alat yang dinamakan haemocytometer . IsolatjamurAntagonis dan jamur patogen yang telah diinkubasi  selama  5  hari  diencerkkan  10 -6 .  Ambil suspensi  sebanyak  1  ml  pada  pengenceran  terakhir menggunakan  pipet  dan  dimasukan  ke  dalam haemocytometer lalu  hitung  jumlah  spora  dalam  5 kotak besar yang dilakukan di bawah mikroskop.
Keterangan :
K = Kerapatan spora per ml t  =  Jumlah  total  spora  dalam  kotak  sampel  yang diamati
n = Jumlah kotak sampel 0,25 merupakan faktor koreksi penggunaan kotak sampel skala kecil dalam haemocytometer .
Diameter  Koloni  Jamur  Antagonis  Dan Jamur Collectotrichum sp.
Pengamatan  dilakukan  dengan  mengukur diameter koloni masing-masing jamur antagonis dan jamur Collectotrichum sp.  Pengamatan  dilakukan pada hari ke 5 setelah isolasi. Menghitung diameter koloni jamur menggunakan rumus berikut:
Keterangan : D =  Diameter  kolonijamur  antagonis  dan  jamur Collectotrichum sp.
d1 = Diameter terpanjang jamur antagonis dan jamur Collectotrichum sp.
d2 = Diameter terpendek koloni jamurantagonisdan jamur Collectotrichum sp.

## Analisis Data
Data yang diperoleh dari hasil pengamatan dalam uji antagonis dilakukan analisis sidik ragam. Jika menunjukkan pengaruh beda nyata, maka akan dilakukan uji BNT pada taraf 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Berdasarkan  pengamatan  di  Laboratorium Hama  Penyakit  tumbuhan  Fakultas  Pertanian Universitas  Mulawarman  maka  diperoleh  Jamur Colletotrichumsp.  Secara  makro  dan  mikro  adalah sebagai berikut:
a. Trichoderma sp.
Berdasarkan  pengamatan  dibawah  mikroskop dengan  pembesaran  400x  jamur  terlihat  secara mikroskopis  jamur Trichoderma sp.  seperti  pada gambar  1  diatas  jamur Trichoderma sp.  memiliki konidiofor  bercabang  menyerupai  piramida  yaitu pada  bagian  bawah    cabang  lateral  yang  berulang- ulang,  sedangakan  semakin  keujung  percabangan menjadi  bertambah  pendek.  Fialid  tampak  langsing dan  panjang  terutama  pada  aspek  dari  cabang, konidia jamur Trichoderma sp memiliki bentuk semi bulat  hingga  oval.  Hal  ini  sesuai  dengan  yang dinyatakan  oleh  (Anderson  and  Domsch,  1978)  ; (Sopialena dkk. 2018).
b. Penicillium sp .
Secara  makroskopis  seperti  pada  gambar  2  diatas jamur Penicillium sp.  memiliki  warna  putih kekuningan  kemudian  setelah  beberapa  hari  warna nya berubah menjadi kuning kemerahan.
Selanjutnya  pengamatan  secara  secara  mikroskopis pada  gambar  diatasjamur Penicillium sp.  memiliki konidium  bercabang-cabang  yang  disebut  phialid sehingga  tampak  membentuk  gerumbul.  Lapisan dari  phialid  yang  merupakan  tempat  pembentukan dan  pengamatan  spora  yang  disebut  sterigma. Penicillium sp. memproduksi racun pada makanan/pakan ternak yang menyebabkan keracunan  pada  manusia  dan  binatang.  Konidia penicillium sp.  menyerupai  manik-manik  kaca  juka dilihat dengan mikroskop (Wulandari, Sulistyowati, and  Muhibuddin  2014)  Banyaknya  konidia  yang berwarna hujau,biru,atau kuning sangat berpengaruh pada  warnna  dari  berbagai  jenis Penicillium sp (Sopialena dkk. 2020)
c. Gliocladium sp.
Secara  makroskopis  jamur Gliocladium sp. Menunjukkan koloni yang berwarna hijau berbentuk bulat degan  diameter 5-8 cm pada hari ke 3. Jamur ini  teridentifikasi  sebagai  jamur Gliocladium sp. Sesuai  dengan  pendapat  Lumsden  (1989)  bahwa bentuk  makroskopis yang disebutkan di atas adalah jamur Gliocladium sp.  Jamur Gliocladium sp. memiliki  senyawa  gliovirin  dan  viridian  yang mampu  menekan  patogen.  Selanjutnya  pengamatan secara  mikroskopis  seperti  pada  Gambar  3  diatas bahwa  jamur  tersebut  memiliki  konidiofor  yang tegak muncul dari subtrat atau hifa bersepta bening
1 a 1 b 3 a
3 b Gambar 1 (a).
Makrokopis Trichoderma sp.(b) Mikrokopis Trichoderma sp. (400x) Gambar 3 (a). Makrokopis Gloicladium sp.(b) Mikrokopis Gliocladium sp..(400x) 2 a 2 b 4 a 4 b Gambar 2 (a). Makrokopis Penicillium sp.(b) Mikrokopis Penicillium sp .(400x) Gambar 4 (a). Makrokopis Rhizopus sp.(b) Mikrokopis
Rhizopus sp .(400x)
dan  tidak  berwarna  ,bercabang  pada  ujung  nya memiliki bentuk penicular dan kepalanya menghasilkan spora fialid yang terkadang berbentuk botol sesuai dengan pendapat Barnet and Hunter(1972),  bahwa  jamur  tersebut  adalah  jamur Gliocladium sp.
d. Rhizopus sp.
Rhizopus sp. pada penelitian ini  memiliki ciri- ciri koloni dengan miselium putih keabuan dan spora abu kehitaman, serta mempunyai  hifa halus dengan spora yang tidak terlalu pnjang dan spora berbentuk bulat (Yu, Xu, and Xiao 2016). Secara makroskopis memiliki  warna  koloni  abu-abu  (kecoklatan), pertumbuhannya  cepat,  dan  membentuk  miselium seperti  kapas.  Kemudian  pengamatan  secara mikroskopis terlihat adanya rhizoid, stolon,
sporangia  pada  ujung  spongiofora  dan  tidak bersepta,  menurut  (Hartanti,  Rahayu,  and  Hidayat 2015)  jamur Rhizopus sp.memiliki  cici-ciri  sebagai berikut:  hifa  nonseptat,  mempunyai  stolon  dan rhizoid  yang  warnanya  gelap  jika  sudah  tua, sporangiofora  tumbuh  pada  noda  dimana  terbentuk juga rhizoid.

## Presentase Hambatan
Berdasarkan hasil analisis sidik ragam pengamatan  presentase  hambatan  jamur  endofit terhadap penyakit tanaman tomat rata-rata presentase  hambatan pada hari ke-1 sampai  dengan hari-6 dapat dilihat pada tabel dibawah ini.
Tabel  1.  Uji  antagonis  patogen  Colletotrichum  sp.  dengan  beberapa  Jamur  Agensia  Hayati  (Trichoderma sp.,Penicillium sp.,Gliocladium sp., dan Rhizopus sp.)
Keterangan : Data ditransformasi ke Arc Sin -1 √𝑥 dan angka yang diikuti huruf kecil yang sama pada kolom yang sama, berarti berbeda tidak nyata pada uji BNT 5%
Berdasarkan hasil pengamatan di atas menunjukkan  bahwa  jamur Trichoderma sp., Gliocladium sp.,  dan Rhizopus sp.mampu  menekan pertumbuhan patogen Colletotrichum sp. sementara jamur  antagonis Penicillium sp.,  terlihat  kurang mampu  dalam  menekan  pertumbuhan  patogen Colletotrichum sp. dikarenakan  jamur Trichoderma sp., Gliocladium sp.,  dan Rhizopus sp.  dapat tumbuh  dengan  lebih  cepat  dibandingkan  dengan pertumbuhan  jamur Penicillium sp.  hal  ini  sesuai dengan  hasil  penelitian penicillium sp.  kurang mampu  dalam  menekan  pertumbuhan  patogen Colletotrichum sp.
Analisis  dengan  uji  BNT  5%  menunjukkan bahwa Penicillium sp  berbeda  sangat  nyata  dan Trichoderma sp. menunjukkan kemampuan menekan  yang  paling  tinggi.  Hal  ini  dikarenakan Trichoderma sp.  memiliki  kemampuan  kecepatan pertumbuhan  yang  sangat  tinggi  dibanding  dengan jamur-jamur  antagonis  lainnya  yaitu  , Gliocladium sp., Penicillium sp., dan Rhizopus sp. Disamping itu jamur Trichoderma sp menghasilkan senyawa yaitu viridin dan gliotoksin yang  berperan  sebagai  jamur antagonis(Tasik dan Widyastuti, 2015) ; (Sopialena 2018) ; (Sopialena 2020).
Perlakuan Minggu Ke- 1 2 3 4 5 6 Tr vs Cl 23,10 32,82b 40,15b 41,87b 50,65b 48,73b Pn vs Cl 36,26 25,54a 29,63a 30,25a 51,33b 54,58b Gl vs Cl 27,17 32,20b 47,07b 46,27b 30,46a 38,31a Rh vs Cl 30,35 23,78a 32,25a 40,08b 39,54b 38,29a
5 7 Gambar 5. Jamur
Trichoderma sp. vs Colletotrichum sp. Gambar 7. Jamur Penicillium sp. vs
Colletotrichum sp.
6
8 Gambar 6. Jamur
Gliocladium sp. vs Colletotrichum sp. Gambar 8. Jamur Rhizopus sp. vs
Colletotrichum sp.
Kemampuan kecepatan
pertumbuhan
Trichoderma sp.  yang  sangat  tinggi  menyebkan Trichoderma sp.  mampu  untuk  menguasai  tempat tumbuhnya jamur atau cawan petri yang terbatas, Trichoderma sp.  mempunyai  mekanisme biokontrol dengan  menginduksi  ketahanan tanaman terhadap  serangan  patogen  (Elizabeth  2009). Trichoderma sp. juga menghasilkan senyawa kimia metabolit  sekunder  dan  memiliki  2  jenis  antibiotik, yaitu viridin dan gliotoksin yang  membuat  jamur patogen  tidak  mampu  berkembang  kemudian  dapat mempengaruhi  dan  menghambat  banyak  sistem fungsional  kemudian  dapat  membuat  patogen menjadi  rentan  ketika  berhadapan  dengan  jamur Trichoderma sp. lebih banyak sehingga lebih mampu untuk
menekan pertumbuhan
patogen Colletotrichum sp.  dibanding  dengan  jamur-jamur antagonis lainnya.

## Mekanisme Antagonis Jamur Endofit
Pengamatan  mekanisme  antagonis jamur endofit  terhadap  cendawan  penyebab  patogen  pada Tomat  dilakukan  selama  6  hari  setelah  inkubasi. Hasil  pengamatan  disajikan  pada  gambar  dibawah ini.  Mekanisme antagonis terjadi apabila jamur yang diujikan saling menekan pertumbuhan.
Pengamatan jenis mekanisme antagonis cendawan endofit tanaman Tomat terhadap beberapa cendawan  patogen  pada  tanaman  Tomat  dilakukan setiap hari dimulai dari hari pertama setelah inkubasi sampai dengan hari  ke enam setelah inkubasi.

## KESIMPULAN DAN SARAN
Berdasarkan hasil penelitian diperoleh kesimpulan  bahwa  jamur  antagonis  yang  paling efektif menekan pertumbuhan
patogen Colletotrichum sp.  adalah Gliocladium sp.,  dan Trichoderma sp.,  sementara  itu  jamur  antagonis Rhizopus sp.,  yang  kurang  efektif  dalam  menekan pertumbuhan  jamur Colletotrichum sp.,  dan  jamur Penicillium sp., merupakan jamur yang paling tidak efektif  dalam  menekan  pertumbuhan  patogen Colletotrichum sp.

## DAFTAR PUSTAKA
Anderson,  J.  P.E.,  and  K.  H.  Domsch.  1978.  A Physiological  Method  for  the  Quantitative Measurement  of  Microbial  Biomass  in  Soils.
Soil Biology and Biochemistry . Elizabeth,  R.  dan  H.  Rachmat.  2009.  Peran  dan Peluang SL-PHT Komoditi Lada Mempengaruhi  Kognitif  Petani  Perkebunan
Rakyat. 1–11.
Hartanti, Anastasia Tatik, Gayuh Rahayu, and Iman Hidayat.  2015.  Rhizopus  Species  from  Fresh Tempeh  Collected  from  Several  Regions  in Indonesia. Journal of Biosciences .
Hersanti, Hersanti, Eti Heni Krestini, and Siti Afiqah Fathin.  2016.  Pengaruh  Beberapa  Sistem Teknologi  Pengendalian  Terpadu  Terhadap Perkembangan
Penyakit Antraknosa (Colletotrichum  Capsici)  Pada  Cabai  Merah Cb-1  Unpad  Di  Musim  Kemarau  2015. Agrikultura .
Iswari,  K.  2015.  Pemanfaatan  Tomat  Dan  Sirsak Sebagai  Bahan  Dasar  Pembuatan  Produk Suplemen Kesehatan. J. Hort .
K., R. P., H. L. Barnett, and Barry B. Hunter. 1972. Illustrated Genera of Imperfect Fungi.
Mycologia .
Kementerian  Pertanian.  2014.  Statistik  Produksi Hortikultura  Tahun  2014. Statistik  Produksi Hortikultura Tahun 2014 .
Lumsden,  R.  D.  1989.  Biological  Control  of Damping-Off Caused by Pythium Ultimum and Rhizoctonia Solani with Gliocladium Virens in Soilless Mix. Phytopathology .
Sopialena.  2018.  Pengendalian  Hayati  Dengan
Memberdayakan Potensi Mikroba. In
Pengendalian Hayati Dengan Memberdayakan Potensi Mikroba , 104.
Sopialena,  Sopian  dan  Lusyana  Dwi  Allita.  2020.
Endophytic  Fungi  Diversity  in  Rice  Plant  and Their Potential as Pest Control. 2: 105–10.
Sopialena,  Suyadi,  Muhamad  Sahil,  and  Juli Nurdiana.  2018.  The  Diversity  of  Endophytic Fungi  Associated  with  Piper  Nigrum  in  the Tropical  Areas:  A  Recent  Study  from  Kutai Kartanegara, Indonesia. Biodiversitas .
Sopialena,  Suyadi,  Sofian,  Devi  Tantiani,  and  Aziz Nur Fauzi. 2020. Efektivitas Cendawan Endofit sebagai  Pengendali  Penyakit  Blast  pada Tanaman  Padi  (Oryza  Sativa). Agrifor 19  (2): 355.
Tasik, Susanti, and Siti Muslimah Widyastuti. 2015. Mekanisme Parasitisme. 15 (1): 72–80.
Wulandari,  Dian,  Liliek  Sulistyowati,  and  Anton Muhibuddin.  2014.  Keanekaragaman  Jamur Endofit  pada  Tanaman  Tomat  (Lycopersicum
Esculentum Mill.) dan Kemampuan
Antagonisnya terhadap Phytophthora Infestans. Hpt 2 (1): 110–18.
Yu,  Xiao  Wei,  Yan  Xu,  and  Rong  Xiao.  2016. Lipases from
the Genus Rhizopus: Characteristics, Expression, Protein Engineering and Application. Progress in Lipid
Research .