Volume 5, Nomor 2, 2021
http://jurnal.utu.ac.id/jakultura
P-ISSN: 2579-4752, E-ISSN: 2620-7397

## KOMBINASI SUHU DAN WAKTU KEJUT PANAS TERHADAP
KEBERHASILAN TRIPLOID IKAN SEURUKAN (Osteochilus sp.)

## TEMPERATURE AND DURATION OF THERMAL SHOCK ON THE SUCCESS OF
TRIPLOID SERUKAN (Osteochilus sp.)
Taufik Akbar 1) , Yusran Ibrahim 1)* , Fazril Saputra 1) , Khaidir 2)
1 Jurusan Akuakultur, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Teuku Umar, Aceh Barat
2 UPR Mina Mandiri Beutong, Kabupaten Nagan Raya *Korespondensi:  sufaldiansyah@utu.ac.id

## ABSTRAK
Penelitian bertujuan mendapatkan umur zigot terbaik untuk proses triploidisasi dengan menggunakan kejut  suhu panas  dan  mengetahui performa  pertumbuhan benih  ikan  seurukan  triploidisasi.  Metode yang  digunakan  adalah  metode  eksperimen  dengan  model  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL),  4 perlakuan, 3 kali ulangan. P0: Pemijahan normal (kontrol) P1: Suhu 42°C umur zigot 15 menit, lama kejut  suhu  2  menit.  P2:  Suhu 42°C  umur  zigot  20  menit,  lama  kejut  suhu  2  menit.  P3:  Suhu 42°C umur  zigot  25  menit,  lama  kejut  suhu  2  menit.  Penetasan  terbaik  ditemukan  pada  perlakuan  P3 dengan  umur  zigot  25  menit  dan  lama  perendaman  selama  2  menit  sebesar  91,27%.  kemudian tinggkat kelangsungan  hidup  tertinggi  ditemukan  pada perlakuan  kontrol yaitu  sebesar  89,98% dan persentase  keberhasilan  triploid  ditemukan  pada  P2  dengan  umur  zigot  20  menit  dan  lama perendaman  selama  2  menit  sebesar  60%.  Dari  hasil  penelitian  Triploidisasi  ikan  seurukan  melalui kejutan  suhu  42 o C  selama  2  menit  pada  umur  zigot  ke  20  menit  setelah  pembuahan  berhasil menginduksi  ikan  triploid.  Perlakuan  optimum  yang  dapat  menghasilkan  triploid  tertinggi  (60%) dengan tingkat kelangsungan hidup 81,1% adalah kejutan suhu 42 o C selama 2 menit pada umur zigot ke 20 menit setelah pembuahan.

## Keywords: Kejutan Suhu Panas, Triploid, Serukan

## ABSTRACT
The purpose  of  the  research  is  to obtain  the most  desirable  zygote  age  for  the  triploidization process using heat shock and to determine the growth performance of Seurukan fish breed as triploidized. The method  used  in  this  study  is  experimental  method  with  a  completely  randomized  design  model, through  4  treatments,  and  3  replications.  P0:  Normal  spawning  (control)  P1:  Temperature  42°C, zygote age 15 minutes old, temperature shock duration 2 minutes. P2: Temperature 42°C, zygote age 20 minutes old, temperature shock duration 2 minutes. P3: Temperature 42°C, zygote age 25 minutes old, temperature shock duration 2 minutes. The preferable hatching was found in P3 treatment with a zygote age of 25 minutes old and immersed duration for 2 minutes which was 91.27%. In addition, the highest  survival  rate  was  found  in  the  control  treatment  which  was  89.98%  and  the  percentage  of triploids  successfulness  was  found  in  P2  with  a  zygote  age  of  20  minutes  old  and  an  immersed duration  for  2  minutes  which  was  60%.  The  results  present  that  the  triploidization  of  Seurukan  fish through  a  temperature  shock  of  42 o C  for  2  minutes  at  the  zygote  age  of  20  minutes  old  after fertilization  succeeded  in  inducing  triploid  fish.  The  optimum  treatment  that  able  to  produce  the highest triploid (60%) with a survival rate of 81.1% is a temperature shock of 42 o C for 2 minutes at the zygote age of 20 minutes old after fertilization.
Keywords: Thermal shock , Triploid , Osteochilus sp
1 Progam Studi Akuakultur, Fakultas Perikanan dan Kelautan, Universitas Teuku Umar Jalan Kampus Alue Peunyareng, Kec. Meureubo, Kab. Aceh Barat, email: yusranibrahim@utu.ac.id
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)

## PENDAHULUAN
Ikan seurukan ( Osteochilus sp.) merupakan spesies ikan air tawar yang paling banyak diminati saat  ini  oleh  masyarakat,  selama  ini  permintaan  ikan  seurukan  untuk  kebutuhan  konsumsi  masih mengandalkan  hasil  tangkapan  dari  alam  yang  ditangkap  langsung  oleh  nelayan,  bahkan  dengan menggnakan cara yang tidak ramah lingkungan dan merusak. Hal tersebut menyebabkan populasi ikan seurukan  yang  terdapat  di  alam  berangsur  kurang  baik  dari  segi  jumlah  maupun  ukurannya.  Oleh karena itu berkaitan dengan permasalahan  yang terjadi perlu dilakukanya alternatif lain yakni sebuah usaha  untuk  membudidayakan  ikan  seurukan,  sehingga  perlu  didapatkan  informasi  dukungan  dalam melakukan  usaha  budidaya  ikan  seurukan  diantaranya  data-data  bioekologi  terkait  ikan  tersebut. Kajian tentang ikan seurukan telah dilakukan oleh  beberapa peneliti sebelumnya, diantaranya Arfandi et  al .  (2014)  yang  mengkaji  tentang  penggunaan  hormon  ovaprim,  ekositosin  dan  ekstrak  hipofisa ayam dalam pemijahan ikan seurukan.
Komoditas ikan ini sudah mulai dibudidayakan oleh beberapa petani di Kabupaten Nagan Raya. Berdasarkan  laporan  petani  ikan  masih  terkendala  pada  laju  pertumbuhan  yang  relatif  lambat  jika dibandingkan  dengan  komoditas  budidaya  lainnya.  Upaya  perbaikan  performa  pertumbuhan  ikan dapat dilakukan dengan rekayasa genetik melalui beberapa metode diantaranya seleksi hibridisasi atau persilangan, rekayasa set kromosom dan transgenesis. Saat ini usaha budidaya ikan seurukan sebagian besar dikalangan pembudidaya  masih dilakukan secara tradisional (klasik) baik dari segi pembenihan maupun  pembesaran  Samsudin et  al .  (2010).  Selain  dari  pada  itu  ikan  seurukan  juga  memiliki pertumbuhan  yang  relatif  sangat  lambat  sehingga  hasil  produksinyamenurun.  Beberapa  usaha budidaya  sudah  pernah  dilakukan  dalam  upaya  untuk  mempercepat  pertumbuhan  diantara  lain menggunakan  aplikasi  probiotik  dan  pemberian  pakan  dengan  kadar  protein  yang  cukup  optimum Yusuf et  al. (2014)  namun  hasilnya  belum  memuaskan.  Untuk  mengantisipasi  hal  tersebut  maka diperlukan aplikasi teknologi rekayasa genetik salah satunya melalui triploidisasi.
Triploidisasi  merupakan  salah  satu  program  pemuliaan  ikan  melalui  manipulasi  kromosom. Tujuannya adalah untuk menghasilkan sebagian atau sepenuhnya ikan steril yaitu ikan yang memiliki tiga  set  kromosom.  Thorgaard et  al .  (1987).  Perkembangan  gonad  ikan  dapat  menghambat  atau menjadi  saingan  dari  pertumbuhan  somatik  karena  sebagian  dari  nutrien  atau  energi  dipakai  untuk pematangan kelamin (Purdom 1973), Pandian et al . (1998). Oleh sebab itu sterilisasi pada ikan dapat mengatasi  pengaruh  pematangan  gonad  dan  dialihkan  untuk  pertumbuhan  ikan.  Sterilasi  pada  ikan dapat  dilakukan  dengan  cara  yaitu  rangsangan  triploidisasi.  Upaya  triploidisasi  dilakukan  untuk mempersingkat  waktu  produksi  dikarenakan  individu  triploid  yang  dihasilkan  memiliki  kemampuan tumbuh  dan  berkembang  lebih  cepat  serta  signifikan  (Haloho et  al. 2015).  Sehingga  induksi  triploid adalah salah satu metode yang efektif saat ini tersedia untuk produksi massal ikan seurukan.

## METODE PENELITIAN

## Rancangan Penelitian
Penelitian  ini  menggunakan  metode  eksperimen  dengan  model  Rancangan  Acak  Lengkap (RAL), 4 perlakuan, 3 kali ulangan. Masing-masing ulangan dipelihara sebanyak 15 ekor larva ikan uji sehingga total ikan uji yaitu 180 ekor.
P0 : Pemijahan (kontrol/ tampa perlakuan) P1 : Suhu 42°C umur zigot 15 menit, lama kejut suhu 2 menit P2 : Suhu42°C umur zigot 20 menit, lama kejut suhu 2 menit P3 : Suhu42°C umur zigot 25 menit, lama kejut suhu 2 menit
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)

## Pemijahan
Pemijahan dilakukan secara buatan, induk betina ikan seurukan diinjeksi Ovaprim dengan dosis 0,5  ml/kg  sedangkan  induk  jantan  dengan  dosis  0,3  ml/kg.  disesuaikan  dengan  berat  bobot  ikan. Penyuntikan dilakukan pada jam 23:00 WIB, setelah 10- 12 jam, Penyuntikan dilakukan pada malam hari  agar  proses  pengerjaan striping lebih  muda  dilakukan  keesokan  harinya.  apabila striping belum berhasil pada  jam tersebut makan tunggu beberapa  jam lagi sekitar 1-2 jam ikan siap di striping dan dilakukan  pembuahan  namun  apabila  hal  tersebut  terjadi  kegagalam  dalam striping kemungkinan besar ikan tersebut belum sempurnah kematangan gonadnya.

## Pengamatan Embrio
Pengamatan  embrio  dilakukan  mengguakan  mikroskop  dengan  pembesaran  10x100  untuk mengamati  telur  yang  telah  diberi  perlakuan  dan  juga  telur  kontrol.    Pengamatan  dilakukan  dengan melihat perkembangan embrio dari telur dan mencatat tiap waktu yang dibutuhkan telur untuk sampai pada tahap-tahap perkembangan embrio hingga menetas menjadi larva.

## Produksi Triploid
Kejut suhu panas dilakukan dalam 2 kotak Styrofoam yang diisi air dengan suhu masing-masing kotaka  dalah  42°C  yang  diberi  kejutan  selama  2  menit  kelompok  telur  yang  telah  disiapkan  dalam saringan  kasa  kemudian  dipindah  kedalam  kotak Styrofoam sesuai  dengan  perlakuan  umur  embrio, telur  ditempatkan  pada  kotak Styrofoam selama  2  menit.  Umu  rembrio  yang  digunakan  adalah  meni tke  15  menit,  20  menit  dan  25  menit  perlakuan  yang  diberikan  merupakan  kombinasi  dari  kedua parameter  tersebut.  Kejut  suhu  dilakukan  dengan  memindahkan  saringan  kasa  yang  berisi  telur kedalam  kotak Styrofoam sesuai  dengan  perlakuan.  Telur  pada  masing-masing  perlakuan  yang  telah dikejut  suhu  panas  diletakan  kembali  kedalam Styrofoam dengan  suhu  air  normal  (28°C  selanjutnya diinkubasi  selama  24  sampai  30  jam  hingga  telur  menetas.  Identifikasi  ikan  triploid  dilakukan  pada larva berumur 1 minggu menggunakan metode Howel & Black (1980).

## Pemeliharaan
Ikan uji dipelihara selama 14 hari dalam toples volume 16 liter. Larva ikan yang berumur 4 hari diberikan pakan kuning telur hingga berumur 14 hari, Pemberian kuning telur dilakukan setiap 6 kali sehari secara adlibitum .

## Parameter Uji
1. Derajat Pembuahan (DPH)
Derajat pembuahan dihitung setelah 6-8 jam fertilisasi, parameter ini untuk melihat kualitas telur merata atau tidak. Rumus yang digunakan sebagai berikut:
DPh (%)   = Jumlah telur yang dibuahi
Jumlah telur yang digunakan x  100
Telur yang dibuahi dilihat dari warnanya yang hijau kecoklatan, sedangkan telur yang tidak dibuahi berwarna putih keruh.
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)

## 2. Derajat Penetasan (DPH)
Derajat penetasan dihitung 3 jam setelah telur menetas, parameter ini untuk melihat perbedaan tingkat  penetasan  antar  perlakuan  pasca  kejutan  suhu  panas.  Dihitung  dengan  menggunakan rumus sebagai berikut:
DPt (%)   = Jumlah telur yang menetas
Jumlah telur yang dibuahi x  100

## 3. Tingkat Kelangsungan Hidup (TKH)
Perhitungan  Kelangsungan  hidup  ikan  menggunakan  rumus  menurut  (Goddart  1996)  dalam Effendi et al . (2006) sebagai berikut:
TKH (%)   = Nt
N0 x  100
Keterangan:
TKH: Tingkat kelangsungan hidup (%) No: Jumlah ikan pada awal pemeliharaan (ekor) Nt: Jumlah ikan pada akhir pemeliharaan (ekor
4. Persentase Triploid
Keberhasilan triploid dapat dihitung dengan menggunakan rumus berikut:
3n (%)   = Jumlah ikan teridentifikasi 3n Jumlah ikan sampel x  100

## Analisis Data
Data  yang  akan  didapat  berupa  tingkat  keberhasilan  Triploidisasi  (%),  selanjutnya  akan dianalisis  secara  ANOVA,  mengunakan  SPSS  22.0  pada  selang  kepercayaan  95%.  Jika  terdapat perbedaan yang nyataantar perlakuan, maka dilakukan uji lanjut (Duncan).

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Derajat Pembuahan
Berdasarkan hasil analisis sidik ragam ANOVA menunjukan bahwa kombinasi suhu dan waktu kejut panas berpengaruh nyata terhadap derajat pembuahan telur ikan  seurukan (P<0,05). Nilai DPH tertinggi  terdapat  pada perlakuan  kontrol yaitu  87,33%  kemudian disusul perlakuan  P2 yaitu  39,7%, sedangkan nilai DPH terendah terdapat pada perlakuan P3 yaitu 22,33% selanjutnya disusul perlakuan P1 yaitu 27,3%.  Derajat pembuahan dapat dilihat pada Gambar 1.

## Derajat Penetasan
Berdasarkan hasil analisis sidik ragam ANOVA menunjukan bahwa kombinasi suhu dan waktu kejut  panas  berpengaruh  sangat  nyata  terhadap  derajat  penetasan  telur  ikan  seurukan  (P<0,05). Nilai DPT  tertinggi  terdapat  pada  perlakuan  kontrol  yaitu  100%  kemudian  disusul  perlakuan  P3  yaitu 91,27%, sedangkan nilai DPT terendah terdapat pada perlakuan P2 yaitu 57,15% selanjutnya disusul perlakuan P1 yaitu 68.3%.
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)
89,98 83,8 81,1 55,56 0 50 100 Kontrol P1 P2 P3 TK H (% ) Perlakuan Gambar 1. Derajat Pembuahan Ikan Serukan
Gambar 2. Derajat penetasan pasca kejut suhu panas

## Tingkat Kelangsungan Hidup
Berdasarkan hasil analisis sidik ragam ANOVA menunjukan bahwa kombinasi suhu dan waktu kejut  panas  tidak  berpengaruh  nyata  terhadap  derajat  penetasan  telur  ikan  seurukan  (P>0.05).  Nilai TKH  tertinggi  terdapat  pada  perlakuan  kontrol  yaitu  89,98%  kemudian  disusul  perlakuan  P1  yaitu 83,8%,  sedangkan  nilai  TKH  terendah  terdapat  pada  perlakuan  P2  yaitu  81,1%  selanjutnya  disusul perlakuan P3 yaitu 55,56%.
Gambar 3. Tingkat kelangsungan hidup ikan serukan pasca kejut suhu panas
87,33 27,3 39,7 22,33 0 20 40 60 80 100 Kontrol P1 P2 P3 D e ra ja t Pe m b u ah an (%) Perlakuan 100 68,3 57,15 91,27 0 20 40 60 80 100 120 Kontrol P1 P2 P3 D e ra ja t Pe n e ta sa n (%) Perlakuan
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)

## Tingkat Keberhasilan Triploid
Persentase  jumlah  nukleolus  pada  ikan  seurukan  berdasarkan  sel  triploid  bervariasi  antar perlakuan. Hasil penelitian  didapatkan bahwa persentase triploid tertinggi ditemukan pada perlakuan P2  dengan  umur  zigot  20  menit  memilki  presentase  sel  triploid  sebesar  60%,  kemudian  diikuti perlakuan  P1  dengan  umur  zigot  15  menit  20  menit  memilki  presentase  sel  triploid  sebesar  40%, selanjutnya disusul perlakuan P3 dengan umur zigot 25 menit memiliki persentase sel triploid sebesar 30%, sedangkan nilai persentase terendah didapatkan pada perlakuan kontrol yaitu 0%.
Gambar 4. Tingkat keberhasilan triploidisasi ikan serukan
Gambar 5. Sebaran 3 titik nukleolus (tanda panas) pada sel ikan serukan triploid
Proses pembuahan pada sel telur sangat dipengaruhi oleh kualitas telur, sperma dan kecepatan sperma  untuk  bergerak  spontan  sehingga  mampu  masuk  ke  dalam  lubang  mikropil  pada  sel  telur. Jumlah telur yang dimasukan kedalam masing-masing wadah sebanyak 1 gram telur (1184 butir telur) Proses  pengamatan  pembuahan  spermatozoa  pada  telur  dilakukan  setelah  6-8  jam  setelah  fertilisasi, sampel telur yang digunakan dan diamati sebanyak 100 butir telur yang diambil dari setiap perlakuan. Keberhasilan pembuahan telur ditandai dengan warna telur yang kecolatan sedangkan telur yang tidak terbuahi akan berwarna putih.
Kombinasi  suhu dan kejut  panas,  jika  suhu yang  terlalu  tinggi  dan  panas  mendadak diberikan pada  telur,  telur  mengalami  kerusakan  sel-sel  telur  yang  akan  berkembang.  Suhu  menjadi  sangat penting dalam gametogenesis, untuk menunjang keberhasilan dalam proses pemijahan dan daya tetas telur.  Suhu  memberi  pengaruh  terhadap  perkembangan  morfologi,  nilai  daya  tetas  dan  tingkah  laku larva  suhu  optimum  menyebabkan  daya  tetas  telur  tinggi  sehingga  diharapkan  dapat  meningkatkan daya  tetas  telur  (Yulianti  2016).  Hal  ini  dibuktikan  oleh  Purdom  (1933),  perendaman  pada  telur dengan  suhu  yang  tinggi  dapat  merusak  protein-protein  sitoplasma  sehingga  berpengaruh  terhadap perkembangan  telur.  Suzuki et  al .  (1997)  mengemukakan  bahwa  rendahnya  derajat  perkembangan telur  akibat  kejutan  panas  tersebut  selain  karena  tidak  meratanya  telur  yang  sedang  mengembang diduga juga karena adanya kejutan ganda yaitu kejutan yang disebabkan oleh adanya inkubasi secara langsung setelah diberi kejutan panas.
0 40 60 30 0 20 40 60 80 Kontrol P1 P2 P3 Trip lo id (%) Perlakuan
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)
Tingkat penetasan telur merupakan persen dari jumlah telur yang menetas baik normal maupun tidak.  Data  tingkat  penetasan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  untuk  mengetahui  bagaimana pangaruh perlakuan terhadap daya tetas telur yang merupakan perbandingan antara tingkat penetasan setiap perlakuan dengan tingkat penetasan kontrol.
Apabila  suhu  dalam  wadah  penetasan  berubah-rubah  maka  akan  berpengaruh  terhadap keberhailan penetasan bahkan akan mengalami kematian. Hasil serupa juga dilaporkan pada beberapa spesies  lainnya  seperti  ikan  maskoki  menghasilkan  derajat  penetasan  13%  pasca  kejut  suhu  42ºC selama  2  menit  Carman et  al. (1991)  Salmo  trutta  L.  9,4-47,9%  Moffett et  al. (1995)  udang Fenneropenaeus  chinensis 37,3-51,4%  (Liu et  al. (2007)  dan  ikan  nila  3,4-28%  (Mukti  2016).  Pada ikan  patin  siam  ( Pangasianodon  hypophthalmus )  dengan  suhu  42 0 C  28,66±1,35%  Ibrahim et  al. (2016). Suhu yang terlalu tinggi atau rendah dapat menghambat proses penetasan, bahkan suhu yang terlalu  ekstrim  (tinggi)  atau  berubah  secara,  mendadak  dapat  menyebabkan  kematian  embrio  dan kegagalan  penetasan  Andriyanto et  al. (2013).  Menyatakan  bahwa  perubahan  fluktuasi  suhu  normal yaitu  tidak  melebihi  2°C.  Efek fluktuasi suhu  juga  berpengaruh  pada  proses aklimasi terutama  pada spesies ikan Kayfan et al . (2010).
Suhu  air  sangat  memengaruhi  perkembangan  embrio,  perlakuan  kejut  suhu  panas  dapat mengakibatkan  kerusakan  pada mikrotubulus yang  membentuk  spindel  selama  meiosis  Gervai et  al. (1980),  menyebabkan  depolimerisasi  pada  polimer  tubulin  dalam  mikrotubulus  yang  esensial  untuk pembentukan  spindel  Bidwell et  al. (1985).  Perlakuan  kejut  suhu  panas  memengaruhi  kondisi  telur dan  dapat  mengakibatkan  kerusakan  pada  spindel  yang  terbentuk  saat  proses  meiosis  dalam  telur (Mukti  2016).  Namun  kerusakan  tersebut  tidak  terjadi  pada  keseluruhan  telur,  sebagian  kecil  telur tetap  mampu  berkembang  dengan  baik.  Pandian et  al (1990)  mengatakan  beberapa  embrio  mati sebelum atau sesaat setelah menetas.
Keberhasilan  persentase  triploid  pada  ikan  seurukan  ditemukan  pada  umur  zigot  20  menit dengan lama perendaman selama 2 menit, setiap ikan berbeda keberhasilan persentase triploid karena ukuran telur pada setiap ikan itu berbeda sehingga ketahannya pun juga berbeda dan pembentukan sel nya  rendah.  Teori  tersebut  dikemukakan  oleh  Nurasni  (2012)  pembentukan  sel  triploid  umumnya tidak  mencapai  100%,  pernyataan  tersebut  diperkuat  oleh  Sukarti et  al. (2006)  bahwa  proses keberhasilan triploidisasi jarang mencapai 100%, semua mengacu pada lama kejutan suhu, ketepatan suhu  dan  ketepatan  waktu  awal  pengejutan.  Pada  umumnya  testis  dan  ovari  ikan  triploid  memiliki ukuran  lebih  kecil  dibandingkan  ikan  diploid  dan  perkembangan  gonadnya  tidak  normal  (Carman 1992).
Peningkatan pertumbuhan ikan triploid tergantung pada spesies dan waktu pemijahannya. Pada beberapa  spesies,  efek  triploidisasi  terhadap  performa  pertumbuhan  baru  terlihat  ketika  gonad  mulai berkembang hingga pematangan akhir, seperti pada ikan Oncorhynchus mykiss , pertumbuhan triploid lebih rendah dibandingkan diploid dari larva hingga perkembangan gonad awal, namun triploid lebih unggul ketika  sudah  memasuki  tahap  pematangan gonad  akhir  (Solar et  al. 1984; Lincoln  dan  Scott 1984;  Chourrout et  al .  (1986).  Hasil  serupa  juga  laporkan  pada  ikan Misgurnus  anguillicaudatus Suzuki et al . (1985), Salvelinus fontinalis (Boulanger 1991), Tilapia Bramick et al. (1995); Pechsiri et al. (2005), Silurus  glanis Linhart et  al .  (2001)  dan Scophthalmus  maximus (Cal et  al. (2006). Perkembangan  gonad  ikan  patin  jantan  lebih  cepat  dibandingkan  betina,  namun  keduanya  belum memasuki  fase  matang  seksual.  Tidak  semua  ikan  bisa  dilakukan  peroses  triploidisasi  dengan  cara pemberian  kejutan  suhu hal  tersebut,  karena  setiap  jenis  ikan  memiliki  ukuran  terlur  yang  berfariasi sehingga pemberian kejutan suhu baik panas maupun dingin belum tentu berhasil (Edriani 2009).
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)

## KESIMPULAN
Triploidisasi  ikan  seurukan  ( Osteochilus sp.)  melalui  kejutan  suhu  42 o C  selama  2  menit  pada umur  zigot  ke  20  menit  setelah  pembuahan  berhasil  menginduksi  ikan  triploid.  Perlakuan  optimum yang  dapat  menghasilkan  triploid  tertinggi  (60%)  dengan  tingkat  kelangsungan  hidup  81,1%  adalah kejutan suhu 42 o C selama 2 menit pada umur zigot ke 20 menit setelah pembuahan.

## DAFTAR PUSTAKA
Arfandi, G., Muchlisin, Z.A., Adlim, M., Fadli, N., Sugianto S. (2014). Induced spawning of seurukan fish,  Osteochilus  vittatus  (Pisces  Cyprinidae)  using  ovaprim,  oxytocin  and  chicken  pituitary gland extracts. AACL Bioflux, 7(5): 412-418.
Andriyanto, W.B. Selamet dan I.M.D.J Ariawan. (2013). Perkembangan Embrio Dan Rasio Penetasan Telur Ikan Kerapu Raja Sunu ( plectropomaleavis ) pada Suhu Media Berbeda. Jurnal Ilmu dan Teknologi Kelautan Tropis , Vol. 5, No. 1, Hlm. 192-203. Beaumont, A.R., Hoare, K. (2003). Biotechnology and Genetics in Fisheries and Aquaculture . Oxford Blackwell Science. hlm 158.
Berrill,  I.K.,  MacIntyre,  C.M.,  Noble,  C.,  Kankainen,  M.,  Turnbull  J.F.  (2012).  Bio-economic  Costs and  Benefits  of  Using  Triploid  Rainbow  Trout  in  Aquaculture:  Reduced  Mortality. Aquacult Eco Mgmnt . 16:365 - 383.
Bidwell,  C.A.,  Chrisman,  C.L.,  Libey,  G.S.  (1985).  Polyploidy  induced  by  heat  shock  in  channel catfish. Aquaculture. 51:25-32.
Carman,  O.,  Oshiro,  T.,  Takashima,  F.  (1991). Estimation  of  effective  condition  for  induction  of triploidy in goldfish Carassius auratus Linnaeus. J Tokyo Univ Fish. 78(2):127 - 135. Carman, O., (1992). Chromosome set manipulation in some warmwater fish doctoral thesis. Tokyo JP: Tokyo University of Fisheries. hlm 131.
Gervai,  J.,  Marian  T.,  Krasznai  Z.,  Nagy,  A.,  Csanyi,  V.  (1980). Occurrence  of  aneuploidy  in radiation gynogenesis of carp Cyprinus carpio L. J Fish Biol . 16(4):435-439. Haloho, Mei, Dinar, T., Nuraini, Riauwaty, M. (2015). Effectiveness of Triploidization On Ingir-Ingir ( Mystus  Nigriceps ) With  Different  Fertilization  and  Heat  Shock.  Fish  Hatchery  and  Breeding Laboratory Faculty of Fishieries and Marine Sciences University of Riau.
Howell,  W.M.,  &  Black,  D.A.,  (1980).  Controlled  Silver  Staining  of  Nucleolus  Organizer  Regions with Protective Colloidal Developer: a1-step methods. Experientia. 36(2):1014 - 1015.
Ibrahim,  Y.,  Saputra,  F.,  Yusnita  D.,  Karim,  A.  (2018).  Evaluasi  pertumbuhan  dan  perkembangan gonad ikan serukan Osteochilus sp yang diberi pakan tepung kunyit. J Akuakultura. 2 (2):7-14. Ibrahim,  Y.,  Soelistyawati,  T.D.,  Carman,  O.  (2017).  Triploid  striped  catfihs  pangasianodon hypopythalmus:  growth  performance  and  gonadal  development. Jurnal  Akuakultur  Indonesia 16 . (1), 76-82.
Kayfan.,  Figen.,  Esin.  (2010) Heat  Shock  Protein  Genes  in  Fish Turkish  Journal  of  Fishseries  and Aquatic SecienseDepartemen of Biology, Goztepe 34722 Istambul, Faculty of Science and Arts, Marmara University Turkey . 10:287-293.
Liu, S. J., Qin QB., Xioa J., Lu WT., Shen JM, Li W, Liu JF., Duan W., Zhang C, Tao M., Zhao RR., Yan  JP.,  Liu  Y.  (2007). The  formation  of  the  polyploid  hybrids  from  different  subfamily  fish crossings and its evulotionary significance. Genetics. 176(2):1023-1034.
Mukti,  A.T.  (2016).  Triploidi  dan  dimorfismeseks,  performa  reproduksi  dan  produksinya  pada  ikan nila Oreochromis niloticu s disertasi. Bogor. InstitutPertanian Bogor.
Nam, Y.K., Park, I.S, Kim, D.S. (2004). Triploid hybridization of fast-growing transgenic mud loach Misgurnus  mizolepis  male  to  cyprinid  loach  Misgurnus  anguillicaudatus  female:  the  first performance  study  on  growth  and  reproduction  of  transgenic  polyploid  hybrid  fish . Aquaculture . 231:559 - 572.
Park,  I.,  Nam,  Y.K.,  Kim,  D.S.  (2006).  Growth  performance,  morphometric  traits  and  gonad development  of  induced  reciprocal  diploid  and  triploid  hybrids  between  the  mud  loach (Misgurnus  mizolepis Günther)  and  cyprinid  loach  (Misgurnus  anguillicaudatus Cantor) . Aquacult Res . 37:1246-1253.
Taufik Akbar et. al. / Jurnal Akuakultura 5 (2), 86-94 (2021)
Pandian,  T.J.,  Varadaraj,  K.  (1990). Techniques  to  produce  100%  male  tilapia.  AGA.The  Iclarm Quarterly . 13(34):3-5.
Piferre, F., Beaumont, A., Falguière, J.C., Flajšhans, M., Haffray, P., Colombo, L. (2009). Polyploid fish  and  shellfish:  production,  biology  and  applications  to  aquaculture  for  performance improvement and genetic containment. Aquaculture. 293:125 - 156. Purdom, C.E. (1993). Genetics and Fish Breeding. Chapman dan hall London fish and fisheries series 8.
Nurasni,  A.  (2012.  Pengaruh  Suhu  Dan  Lama  Kejutan  Suu  Panas  Terhadap  Triploidisasi  Ikan  Lele Sangkuriang ( Clarias gariepinus ). JAS .2(1).1-10. Soviawati,  E.  (2004).  Pengaruh  Kejutan  Suhu  Panas  ( Heat  Shock )  Terhadap  PenetasanTelur (Heatching  Rate)  dan  Kelulusan  Hidupan  (Survival  Rate)  Larva  Ikan  Mas  ( Cyprinus  carpio ) Pada  Proses  Androgenesis Mitosis, Skripsi  Universitas  Jember,  Program  Studi  Pendidikan Biologi, Jurusan Matematika Dan Ilmu Pengetahuan Alam.
Sukarti,  K.I.,  Djawad,  dan  Y.  Fujaya.  (2006).  Pengaruh  Lama  Kejutan  Suhu  Panas  Terhadap Keberhasilan Triploid Ikan Lele (clarias batrachus). Sains & teknologi. Vol. 6 No.3:135-142. Suzuki, R., Nakanishi, T., Oshiro, T. (1985). Survival, growth and sterility of  induced triploid in the cyprinid loach Misgurnus anguillicaudatus. Bull. Jpn Soc Sci Fish. 51:889-894. Thorgaard,  G.H.S.K.,  Allen,  Jr.  (1987). Chromosome  manipulation  and  markers  in  fisheries menagement.  In:  Ryman,  N.,  Utter,  F.  (Eds.),  Population  Genetics  and  Fishery  Mnagement. University of Washington.
Yusuf,  D.H,  Sugiharto,  G.E.  Wijayanti.  (2014).  Perkembangan  post-larva  ikan  nilem  (Osteochilus hasselti C.V) dengan pola pemberian pakan berbeda. Scripta Biologica, 1(3): 7-14.
Yulianti,  B.E.  (2016).  Pengaruh  Suhu  Terhadap  Perkembangan  Telur  Dan  Larva  Ikan  Tor  (Tor tambroides) Skripsi, Fakultas Pertanian Universitas Lampung: Bandar Lampung.