Identifikasi Cacing Pita ( Taenia solium ) dengan Metode Mikroskopis dan Nested PCR
Luh Putu Rinawati, 1 Jannah Sofi Yanty, 1 Surya Bayu Kurniawan, 1 Heri Setiyo Bekti, 1,3 Anak Agung Nanak Antarini, 2,3 I Gusti Putu Sudita Puryana, 2,3 Pande Putu Ayu Patria Dewi, 4
Aprilia Rakhmawati. 5
1 Jurusan Teknologi Laboratorium Medis, Poltekkes Kemenkes Denpasar, Bali-Indonesia.
2 Jurusan Gizi, Poltekkes Kemenkes Denpasar, Bali-Indonesia.
3 Pusat Unggulan Ilmu Pengetahuan dan TeknologiPoltekkes Kemenkes Denpasar, Bali-Indonesia.
4 Departemen Patologi Klinik, Fakultas Kedokteran-Universitas Udayana, Bali-Indonesia.
5 Jurusan Teknologi Laboratorium Medis, Sekolah Tinggi Kesehatan Bina Cipta Husada, Jawa Tengah-Indonesia

## Abstrak
Taenia  solium merupakan  parasit  yang  dapat  menimbulkan  infeksi  taeniasis  dan  sistisekosis.  Di  Indonesia terutama di Bali kejadian taeniasis tinggi yang disebabkan kebiasan masyarakatnya mengonsumsi “lawar pork”. Daging babi yang terinfeksi dapat menjadi sumber penularan T. solium . Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengidentifikasi T. solium menggunakan metode mikroskopis dan Nested PCR. Penelitian merupakan penelitian deskriptif  dengan  desain  observasional  yang  dilakukan  terhadap  26  sampel  yang  diperiksa  secara  mikroskopis dan  molekuler  menggunakan  Nested  PCR  dengan  primer  spesifik  terhadap  gen  Tso31.  Dari  hasil  penelitian menggunakan metode mikroskopis diperoleh sebanyak 21 sampel yang positif yang mengandung bagian cacing dan telur cacing, sedangkan dengan metode Nested PCR diperoleh 2 sampel positif yang memiliki berat molekul 234  bp.  Identifikasi T.  solium pada  manusia  penting  karena  diperlukan  untuk  memberikan  pengobatan  tepat waktu pada penderita sekaligus untuk memutus rantai penularan parasit tersebut.
Kata Kunci : Mikroskopis, Nested PCR, Taenia solium , Tso31
Identification of Tapeworm ( Taenia solium ) Using Microscopic and Nested PCR Methods

## Abstract
Taenia solium is a parasite can cause taeniasis ang cysticercosis infections. In Indonesia, particularly in Bali, the incidence  of  taeniasis  is  high  due  to  the  coomunity’s  habit  of  consuming  “lawar  pork”.  Infected  pork  ca  be  a source of T. solium transmission. The purpose of this study is to identify T. solium using microscopic methods and Nested PCR. The research nethod is is a descriptive study with an observational design and  was conducted on 26 samples examined microscopically and molecularly using Nested PCR with primer specific to the Tso31 gene.  From  the  microscopic  method  results,  21  samples  were  found  to  be  positive,  containing  worm  segments and  eggs,  while  the  Nested  PCR  method  identified  2  positive  samples  with  a  molecular  weight  of  234  bp. Identifying T.  solium in  humans  is  important  to  provide  timely  treatment  for  patients  and  to  break  the transmission chain of this parasite.
Keywords:  : Microscopis, Nested PCR, Taenia solium , Tso31
Korespondensi: Luh  Putu  Rinawati,  Jurusan  Teknologi  Laboratorium  Medis,  Poltekkes  Kemenkes  Denpasar, Jalan  Sanitasi  No.  1,  Sidakarya-Denpasar,  Bali, mobile 081703709023, e-mail luhputurinawati@gmail.com

## Pendahuluan
Cacing merupakan salah satu hewan yang bersifat parasit jika berada pada makhluk hidup lainnya.  Penyakit  yang  dapat  ditimbulkan  dari infeksi cacing yakni Taeniasis yang disebabkan oleh Taenia  solium,  Taenia  saginata, dan Taenia  asiatica .    Manusia  dapat  terinfeksi cacing  pita  ini  dengan  memakan  daging  sapi mentah  atau  setengah  atau  daging  babi  (World Health  Organization,  2022).  Parasit Taenia solium ,  umumnya  dikenal  sebagai  cacing  pita babi  adalah  agen  penyebab  taeniosis  dan sistiserkosis  manusia.  Infeksi Taenia  solium dianggap  sebagai penyakit dengan  konsekuensi terhadap  kesehatan  dan  ekonomi  masyarakat yang  signifikan  yang  mempengaruhi  sebagian besar negara-negara kurang berkembang dengan  kondisi  budaya,  sosial  ekonomi,  dan sanitasi  tertentu cacing  (Murrell  et  al.,  2005)..
Taeniasis
merupakan penyakit yang ditimbulkan  dari  infeksi  cacing,  salah  satunya dapat  disebabkan  oleh Taenia  solium .  Manusia dapat  terinfeksi  cacing  pita  ini  dengan mengonsumi daging babiyang terinfeksi (World Health Organization, 2022).
Taeniasis  dapat  ditemukan  hampir  di seluruh  dunia.  Dari  Amerika,  Afrika,  hingga kawasan  Asia  Timur  dan  Asia  Tenggara termasuk Indonesia(Eichenberger et al., 2020).Kasus  taeniasis  di  Indonesia  umumnya disebabkan  oleh Taenia  solium dan Taenia saginata .  Di  provinsi  Bali  potensi  kejadian taeniasis tinggi terutama di daerah Gianyar dan Karangasem
dikarenakan kebiasaan masyarakatnya  dalam  mengonsumsi  daging babi terutama daging babi mentah yang disebut “Pork Lawar” (Swastika et al., 2017).
T. solium dapat menginfeksi manusia jika masuk  ke  dalam  saluran  pencernaan  yang mengakibatkan taeniasis dansistiserkosis.
Taeniasis  merupakan  istilah  yang  ditujukan untuk  infeksi  yang  disebabkan  oleh  cacing dewasa,  sedangkan  sistiserkosis  ditujukan  bagi infeksi  yang  disebabkan  larva  cacing  (Murrell et  al.,  2005). Infeksi  pada  manusia  dengan cacing  pita Taenia  solium menyebabkan beberapa  gejala  klinis.  Namun,  selain infektif untuk babi, telur Taenia solium juga dapat  menginfeksi  manusia  jika  dicerna, menyebabkan  infeksi  dengan  parasit  larva dalam  jaringan  (human cysticercosis ). Infeksi  ini  dapat  berakibat  sangat  buruk pada  kesehatan  manusia.  Larva  ( cysticerci ) dapat  berkembang  di  otot,  kulit,  mata,  dan sistem saraf pusat. Ketika kista berkembang
di  otak,  kondisi  ini  disebut  sebagai neurocysticercosis (OH Bruto, 2012).
Deteksi  terhadap  infeksi T.  solium pada manusia  sangat  penting  karena  telur  parasit yang  dikeluarkan  bersama  tinja  manusia bertanggungjawab  atas  kejadian  sistiserkosis dan  taeniasis  pada  manusia.  Metode  diagnosis yang banyak digunakan adalah metode mikroskopis.  Akan  tetapi,  metode  ini  memiliki memiliki kelemahan yaitu tidak dapat membedakan morfologi telur atau proglotid dari spesies  taeniasis  sehingga  identifikasi  menjadi tidak  spesifik(Samorek-Pieróg  et  al.,  2018). Pengembangan  metode  identifikasi  taeniasis dengan  teknik  berbasis  molekuler  yang  cepat dan  sensitif  akan  sangat  membantu  dalam penegakan diagnosis terhadap penyakit taeniasis. Penelitian terbaru, deteksi menggunakan  metode  Nested  PCR  dapat mengindentifikasi spesies Taenia yang menginfeksi  babi.  Nested  PCR  merupakan prosedur  dua  langkah  dan  dari  beberapa prosedur  berbasis  molekuler,  Nested  PCR merupakan  cara  terbaik  untuk  mengatasi tantangan  dalam  memperkuat  DNA  yang diekstraksi  dari  sampel  tinja  (Mayta  et  al., 2008).
Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah  untuk mengidentifikasi T. solium menggunakan metode mikroskopis dan Nested PCR.

## Metode
Penelitian  yang  dilakukan  merupakan penelitian
deskriptif dengan desain
observasional.  Penelitian  dilakukan  dari  bulan Januari  sampai  Oktober  2023.  Penelitian  ini dilakukan di kabupaten Gianyar untuk penagmbilan  feces  penduduk  sebanyak  26 orang, dan untuk pemeriksaan sampel dilakukan  di  Laboratorium  Jurusan  Teknologi Laboratorium  Medis  Poltekkes  Kemenkes Denpasar. Penelitian ini mendapatkan persetujuan  etik/ ethical  approval ,  dari  Komisi Etik  Penelitian  Kesehatan  (KEPK)  Politeknik Kesehatan
Denpasar, dengan Nomor: LB.02.03/EA/KEPK/0663/2023.
Pengambilan  sampel  dilakukan  setelah penduduk  bersedia  menjadi  responden  dan menyetujui informed  consent .  Sampel  feses tersebut  dilakukan  pemeriksaan  mikroskopik dan  molekuler.  Hasil  dari  pemeriksaan  feses tersebut  diolah  sebagai  data  penelitian  dengan memasukkan hasilnya ke dalam kategori positif atau negatif.
Preparasi  sampel  feses,  yaitu  dimulai dengan pengambilan sampel feses
menggunakan  lidi  steril.  Sampel  feses  diambil secukupnya  lalu  ditambahkan  dengan  2,5% potassium dikromat.Perbandingan
yang digunakan  adalah  1:2.  Selanjutnya  dilakukan pemeriksaan mikroskopis dan molekuler.
Pemeriksaan mikroskopis dilakukan dengan  menambahkan  larutan  NaCl  jenuh  ke dalam sampel kemudian dihomogenkan. Sampel  ditutup  menggunakan  cover  glass  dan diinkubasi  selama  15  menit  pada  suhu  27 0 C. Diambil larutan paling atas lalu diteteskan pada obyek  glass,  selanjutnya  ditambahkan  larutan lugol  1%  dan  ditutup  dengan  cover  glass.
Pengamatan dilakukan
menggunakan
perbesaran 40X. Pemeriksaan molekuler dilakukan dengan persiapan sampel yang dimulai dengan menambahkan aquadest ke sampel. Selanjutnya dilakukan  sentrifus  dengan  kecepatan  14.000 rpm  selama  10  menit.  Supernatan  lalu  dibuang kemudian  sampel  dicuci  dengan  aquadest sebanyak  7  kali.  Ekstraksi  DNA  sampel dilakukan  menggunakan  QIAamp-Fast  DNA Stool Mini Kit.
Pemeriksaan  Nested  PCR  dilakukan untuk  mendeteksi  protein onkosfer Tso31  yang ada  pada T.  solium .  Master  Mix  untuk pemeriksaan  ini  dilakukan  dengan  mencampur 3  mM  MgCl2,  200  μM  deoxynucleoside triphosphate, 0.2 μg/μL BSA, 0.8 μM primer I, 0.125  U  Taq  Polymerase,  dan  2.0  μL  sampel, total  volume  Master  mix  adalah  25  μL. Amplifikasi  PCR  dilakukan  dengan  denaturasi awal pada suhu 95 0 C selama 3 menit dengan 25 siklus,  yang  terdiri  dari  denaturasi  pada  suhu 95 0 C  selama  30  detik,  annealing  pada  suhu 55 0 C  selama  30  detik,  dan  ekstensi  pada  suhu 72 0 C selama 1 menit. Selanjutnya ekstensi akhir pada  suhu  72 0 C  selama  10  menit.  Produk amplifikasi  PCR  dielektroforesis  menggunakan gel  agarose  2%  dan  diwarnai  menggunakan etidium  bromida  selama  10  menit.  Gel  yang sudah  terwarnai  dilihat  dengan  transluminator dan diamati ada tidaknya pita.
PCR yang kedua
dilakukan
menggunakan Biometra Tadvanced. Master mix sejumlah  25  μL  yang  terdiri  dari  2.5  mM MgCl2, 200 μM deoxynucleoside triphosphate, 0.2 μg/μL BSA, 0.8 μM primer I, 0.125 U Taq Polymerase,  dan  2.0  μL  sampel.  PCR  yang kedua  dilakuakn  dengan  suhu  denaturasi  awal 95 0 C  selama  3  menit  diikuti  dengan  25  siklus, yang  terdiri  dari  denaturasi  pada  suhu  95 0 C selama  30  detik,  annealing  pada  suhu  60 0 C selama  30  detik,  dan  ekstensi  pada  suhu  72 0 C selama 1 menit. Ekstensi akhir pada suhu 72 0 C selama  10  menit.  Amplikon  dielektroforesis
pada  gel  agarose  2%.  Gel  diwarnai  dengan etidium bromida selama 10 menit dan diperiksa dengan transluminator.
Data  hasil  pemeriksaan  sampel  baik dengan  metode  mikroskopis  dan  molekuler, dideskripsikan  berdasarkan  kategori  positif  dan negatif.  Pada  pemeriksaan  mikroskopis  positif, jika  ditemukan  parasit  pada  sampel  yang diperiksa  dan  negatif,  jika  tidak  ditemukan parasit pada sampel. Pada pemeriksaan molekuler,  positif  jika  terdapat  pita/band  pada agarose  2%  dengan  berat  molekul  234  bp,  dan negatif jika terdapat pita/band pada agarose 2% dengan berat molekul tidak 234 bp.

## Hasil
Hasil pemeriksaan mikroskopis dan nested PCR disajikan pada tabel 1 , berikut:
Tabel  1. Hasil Pemeriksaan Mikroskopisdan Nested PCR
Mikroskopis Nested PCR Positif Negatif Positif Negatif 21 5 2 24
Berdasarkan tabel 1,  dari  pemeriksaan terhadap  terhadap  26  sampel  feses,  hasil mikroskopis  didapatkan  sebanyak  21  sampel positif dengan ditemukan proglotid sebanyak 20 sampel  dan  1  sampel  ditemukan  adanya  telur Taenia . Sebanyak 5 sampel negatif karena tidak ditemukan  telur  maupun  bagian  tubuh  cacing pada  preparat.  Hasil Nested  PCR didapatkan  2 sampel  positif,  dengan  terdapat  pita/band dengan berat molekul 234bp.
Hasil Nested PCR,  dutujukan  dengan hasil  elektroforesis  pada  gel  agarose,  yang disajikan pada Gambar 1 dan Gambar 2 .
Gambar 1. Hasil elektroforesis, dengan menggunakan  gel  agarose  2%;  M  (Marker/DNA ledder); 1 (well 2, sampel kode 1); 2 (well 3, sampel kode 2); 3 (well 4, sampel kode 3); 4 (well 5, sampel kode 4); 5 (well 6, sampel kode 5); 6 (well 7, sampel kode 6);7 (well 8, sampel kode 7); 8 (well 9, sampel kode  8);  9  (well  10,  sampel  kode  9);  10  (well  11, sampel  kode  10);  11  (well  12,  sampel  kode  11);  12 (well 13, sampel kode 12); 13 (well 14, sampel kode 13);  14  (well  15,  sampel  kode  14);  15  (well  16, sampel kode 15); dan 16 (well 17, sampel kode 16).
Dari gambar  1 ,  menunjukan  terdapat band /pita  dari    2  sampel  yang  menunjukkan berat molekul sebesar 234 bp.
Gambar 2. Hasil elektroforesis, dengan menggunakan  gel  agarose  2%;  M  (Marker/DNA ledder);  1  (well  2,  sampel  kode  17);  2  (well  3, sampel kode 18); 3 (well 4, sampel kode 19); 4 (well 5,  sampel  kode  20);  5  (well  6,  sampel  kode  21);  6 (well 7, sampel kode 22);7 (well 8, sampel kode 23); 8 (well 9, sampel kode 24); 9 (well 10, sampel kode 25); dan 10 (well 11, sampel kode 26).
Dari Gambar  2 ,  menunjukan  tidak terdapat band /pita  sampel  yang  menunjukkan berat molekul sebesar 234 bp.

## Pembahasan
Pada  pemeriksaan  mikroskopis  dari sampel  feces  yang  didapatkan,  kebanyakan sampel  ditemukan  bagian  cacing  dan  teluir cacing,  hal  ini  dapat  terkait  dengan  kebiasaan dari  penduduk  yang  diambil  sampel  nya  yaitu memakan  lawar  plek,  secara  rutin.  Pada konsistensi sampel juga didapatkan kebanyakan sampel  konsistensi  nya  cair,  dan  dapat diindikasi sebagai adanya parasit dalam sampel tersebut.
Pada  pemeriksaan  mikroskopis  dari sampel  feses  yang  didapatkan,  kebanyakan sampel  ditemukan  bagian  cacing  dan  telur cacing.  Hal  ini  dapat  terkait  dengan  kebiasaan dari  para  responden  yaitu  memakan  “lawar pork” secara rutin. Lawar merupakan  makanan tradisional  Bali  yang  terbuat  dari  daging  babi yang  populer  dan  semakin  luas  konsumennya. Lawar  terbuat  dari  campuran  daging,  kulit daging,  sayur,  kelapa,  dan  bumbu.  Dalam pembuatan  lawar  jika  daging  babi  yang digunakan  terinfeksi T.  solium maka  bisa menjadi  sumber  infeksi  taeniasis  (Saraswati  et al., 2016; Swastika et al., 2017).
Pemeriksan mikroskopik
untuk indentifikasi  telur  cacing  merupakan  alat diagnostik standar, yang masih banyak digunakan sebagai pemeriksaan rutin di banyak laboratorium,  pada  metode  ini  menggunakan alat  dan  bahan  yang  mudah  digunakan,  serta prosedur pemeriksaan cukup sederhana. Pemeriksaan  mikroskopis  memiliki  sensitivitas
yang  tinggi  akan  tetapi  spesifitasnya  rendah, yang  disebabkan  morfologi  telur  pada  spesies Taenia  spp  yang  mirip,  serta  pengamatan struktur  internal  proglotid  untuk  menentukan spesies Taenia sp (Bekti, dkk., 2021). Telur T  solium dapat  bertahan  selama delapan  minggu  di  lingkungan  luar  hospes, serta  infektif  baik  bagi  manusia  serta  babi (Eom, 2020). Diagnosis taeniasis dapat dilakukan  dengan  mengidentifikasi  telur  dan proglotid cacing pada feses secara mikroskopik. Telur  cacing  Taenia  berbentuk  spherical, mengandung embrio, dan berwarna coklat. Pada larutan  garam  jenuh,  telur  akan  mengapung. Dengan cara membedakan morfologinya, proglotid  Taenia  dapat  dibedakan  dari  cacing pita  lainnya  (Eom,  et  al.,  2020;  Estunigsih, 2009).
Penelitian  yang  dilakukan  oleh  Bekti, dkk  (2021)  dengan  mengidentifikasi T.solium pada  feses  babi  ditemukan  17  sampel  positif dari 31 sampel yang diambil dari babi yang ada di  peternakan  di  kota  Denpasar  (Bekti  et  al., 2021).  Hal  ini  menandakan  bahwa  sebagian babi  yang  ada  di  Bali  terinfeksi T.solium .Pada konsistensi sampel juga didapatkan kebanyakan sampel konsistensinya cair dan dapat diindikasikan  sebagai  adanya  parasit  dalam sampel tersebut(Kasırga, 2019).
Dua sampel dalam penelitian ini menunjukkan  berat  molekul  234  bp  dengan menggunakan  primer  Tso31  yang  spesifik menunjukkan adanya T. solium . Penelitian yang dilakukan  Vargass-Calla  (2019)  menunjukkan bahwa  penggunaan  primer  Tso31  dengan  berat molekul  234bp  pada  10  sampel  feses  manusia yang positif T. solium dan 7 sampel yang positif T.  multiceps .  Hal  ini  disebabkan  karena homolog  gen T.  solium dengan T.  multiceps sebesar  91,9%(Vargas-Calla  et  al.,  2019). Habibah  dkk  (2021)  melakukan  penelitian menggunakan  Nested  PCR  dengan  primer Tso31  dan  didapatkan  1  sampel  positif  dari sampel feses babi dari peternakan babi di Kota Denpasar(Habibah et al., 2021).
Identifikasi T.  solium menggunakan metode molekuler dipengaruhi beberapa faktor. Penelitian  yang  dilakukan  Yamasaki  (2004) menyatakan  bahwa  sampel  yang  mengandung telur  cacing  ≥50/1  gram  feses  dapat memberikan  hasil  amplifikasi  yang  lebih  baik. Hal  ini  terkait  dengan  konsentrasi  DNA  yang tinggi  pada  proses  ekstraksi(Yamasaki  et  al., 2004). Penelitian yang dilakukan Flores (2018), menyebutkan  sensitivitas  analitik  untuk  deteksi molekuler T.  solium pada  manusia  yaitu  kadar
DNA dari sampel feses sebesar 400 fg(Flores et al., 2018).
Identifikasi orang yang terkena infeksi T. solium penting  untuk  memberikan  pengobatan yang tepat waktu dan memutus siklus penularan parasit.  Metode  diagnostik  tradisional  adalah dengan  pengamatan  langsung  telur  atau  bagian cacing  menggunakan  mikroskop  konvensional pada  sampel  tinja.  Akan  tetapi,  karakteristik biologis  pelepasan  telur T.  solium dalam  tinja menyebabkan sensitivitas metode   mikroskopis bervariasi antara 3,9% dan 52,5%. Pengamatan secara mikroskopis juga tidak dapat membedakan  antara T.  solium dan T.  saginata karena telurnya mirip secara morfologi(C et al., 2020).
Diagnosis  berdasarkan  deteksi  DNA T. solium pada  sampel  menggunakan  metode molekuler yaitu PCR adalah teknik yang sangat berguna dengan spesifisitas 100% dan sensitivitas  97-100%  ketika  sebuah  fragmen gen  Tso31  dari T.solium diamplifikasi  dengan Nested PCR (C et al., 2020).

## Daftar Pustaka
Bekti,  H.  S.,  Habibah,  N.,  Rinawati,  L.  P., Yasa,  N.  P.  C.  D.  P.,  Rindi,  O.  D.  G., Dewi, N. K. A. K., Savitri, N. P. A. D., & Rakhmawati,  A.  (2021).  Identifikasi Taenia  solium  secara  Mikroskopis  pada Peternakan  Babi. Jurnal  Kesehatan , 12 (1), 74–82.
C, F.-M., A, A., & S, D.-B. (2020). Nested PCR for  the  detection  of  Taenia  solium  DNA instool samples. MedRxiv , 06 (29), 64–71.
Del  Brutto  OH.  Neurocysticercosis:  A review. ScientificWorldJournal.
2012;2012.
Eichenberger, R. M., Thomas, L. F., Gabriël, S.,
Bobić, B., Devleesschauwer, B., Robertson, L. J., Saratsis, A., Torgerson, P.  R.,  Braae,  U.  C.,  Dermauw,  V.,  & Dorny,  P.  (2020).  Epidemiology  of Taenia saginata taeniosis/cysticercosis: A systematic  review  of  the  distribution  in East, Southeast and South Asia. Parasites and Vectors , 13 (1), 1–11. https://doi.org/10.1186/s13071-020- 04095-1. Estuningsih  S.  E.,  2009.  Taeniasis  dan Sistiserkosis Merupakan Penyakit
Zoonosis  Parasiter.  WARTAZOA  19(2),
84–92.
Flores,  M.  D.,  Gonzalez,  L.  M.,  Hurtado,  C., Motta,  Y.  M.,  Domínguez-Hidalgo,  C., Merino, F. J., Perteguer, M. J., & Gárate, T.  (2018).  HDP2:  A  ribosomal  DNA (NTS-ETS)  sequence  as  a  target  for species-specific  molecular  diagnosis  of intestinal  taeniasis  in  humans. Parasites and Vectors , 11 (1), 1–8. https://doi.org/10.1186/s13071-018- 2646-6 Habibah, N., Bekti, H. S., Wayan, N., Kumara,
R.,  Rinawati,  L.  P.,  Burhanuddin,  & Rakhmawati, A. (2021). Primers application with the Tso31 gene target in the  molecular  identification  of  Taenia solium. Muhammadiyah Medical Journal , 2 (1), 35–40. https://doi.org/10.24853/mmj.2.1.35-40
Kasırga,  E.  (2019).  The  importance  of  stool tests  in  diagnosis  and  follow-up  of gastrointestinal  disorders  in  children. Turk  Pediatri  Arsivi , 54 (3),  141–148. https://doi.org/10.14744/TurkPediatriArs. 2018.00483
Keeseon  S.  Eom,  Han-Jong  Rim,  Hyeong-Kyu Jeon,  2020,    Taenia  asiatica:  Historical overview  of  taeniasis  and  cysticercosis with molecular characterization, Advances  in  Parasitology,  Academic Press, Volume 108, 2020, Pages 133-173, https://doi.org/10.1016/bs.apar.2019.12.0
04.
Mayta,  H.,  Gilman,  R.  H.,  Prendergast,  E., Castillo,  J.  P.,  Tinoco,  Y.  O.,  Garcia,  H. H.,  Gonzalez,  A.  E.,  &  Sterling,  C.  R. (2008). Nested PCR for specific diagnosis  of  Taenia  solium  taeniasis. Journal  of  Clinical  Microbiology , 46 (1), 286–289.
https://doi.org/10.1128/JCM.01172-07
Murrell,  K.  D.,  Dorny,  P.,  Flisser,  A.,  Geerts, S.,  Kyvsgaard,  N.  C.,  McManus,  D., Nash,  T.,  &  Pawlowski,  Z.  (2005). WHO/FAO/OIE guidelines for the surveillance,  prevention  and  control  of taeniosis/cysticercosis. Paris: World Health  Organisation  for  Animal  Health (OIE),  2005.  In World  Organisation  for Animal Health (OIE) .
Samorek-Pieróg,  M.,  Karamon,  J.,  &  Cencek,
T.  (2018).  Identification  and  control  of sources  of  Taenia  solium  infection  -  the attempts to eradicate the parasite. Journal of  Veterinary  Research  (Poland) , 62 (1), 27–34. https://doi.org/10.2478/jvetres- 2018-0004
Saraswati,  N.  P.  T.,  Mulyasari,  I.,  &  Pontang, G.  S.  (2016). Hubungan  Kebiasaan Konsumsi  Lawar  dengan  Status  Gizi pada  Siswa  Usia  16-18  tahun  di  SMA Negeri  8  Denpasar .  STIKes  Ngudi Waluyo Ungaran.
Swastika,  K.,  Wandra,  T.,  Dharmawan,  N.  S., Sudarmaja,  I.  M.,  Saragih,  J.  M., Diarthini,  L.  P.  E.,  Ariwati,  L., Damayanti,  P.  A.  A.,  Laksemi,  D.  A.  A. S., Kapti, N., Sutisna, P., Yanagida, T., & Ito,  A.  (2017).  Taeniasis  caused  by Taenia  saginata  in  Gianyar  town  and Taenia solium in Karangasem villages of Bali,  Indonesia,  2011–2016:  How  to detect  tapeworm  carriers,  anamnesis  or microscopy? Acta  Tropica , 174 (June), 19–23. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2017 .06.013
Vargas-Calla,  A.,  Gomez-Puerta,  L.  A.,  Lopez, M. T.,  Gracia,  H.  H.,  &  Gonzalez,  A.  E. (2019). Molecular characterization of the Taenia  solium  Tso31  antigen  and homologous of other Taenia species from Peru. Parasitol  Res , 118 (4),  1307–1309. https://doi.org/10.1007/s00436-018- 06195-5.Molecular
World
Health Organization.
(2022). Taeniasis/cysticercosis . https://www.who.int/news-room/fact- sheets/detail/taeniasis-cysticercosis
Yamasaki, H., Allan, J. C., Sato, M. O., Nakao, M., Sako, Y., Nakaya, K., Qiu, D., Mamuti, W., Craig, P. S., & Ito, A. (2004). DNA Differential Diagnosis of Taeniasis and Cysticercosis by Multiplex PCR. Journal of Clinical Microbiology , 42 (2), 548–553. https://doi.org/10.1128/JCM.42.2.548- 553.2004