e- Jurnal Rekayasa dan Teknologi Budidaya Perairan

## RELATIVE FECUNDITY, FERTILIZATION DEGREE AND HATCHING DEGREE OF FEMALE GOLDFISH (Carassius auratus) WITH
RANGRANG ANTS EGG (Oecophylla smaragdina) AND OOCYTE

## DEVELOPER COMBINATION
Mutiara Wahyuni 1 , Munti Sarida *1 , Deny Sapto Chondro Utomo 1

## ABSTRACT
Length  of  time  entering  readiness  early  reproduction  so  that  the  relative fecundity  and  the  low  degree  of  fertilization  and  the  degree  of  hatching  in  the goldfish hatchery are a challenge in the effort to provide goldfish seeds in quality and quantity. The effort was made by combining kroto and oocyte developer in the female goldfish. This experiment was carried out in September 2019-March 2020 at the Aquatic Productivity Laboratory of the Faculty of Agriculture, University of Lampung.  The  test  fish  used  were  60  females  5-month-old  brood  stock,  with  an average weight of 14.69±3.69 g. This study used a completely randomized design using two factors, kroto (g / kg of fish) and oocyte developer (ml / kg of feed) with two levels each: K 1 O 1 (0 + 0), K 2 O 1 (30 + 0), K 1 O 2 (0 + 0.5), and K 2 O 2 (30 + 0.5) and 3 replications for each treatment. The results showed that factor K (kroto) and factor O (oocyte developer) had no effect on the relative fecundity of female goldfish during 8 weeks of maintenance. Meanwhile, the combination of kroto and  oocyte developer affected the relative fecundity of the female goldfish at the 8 th week of rearing, the degree of fertilization, and the degree of hatching.
Keyword: female goldfish, kroto, oocyte developer, reproductive performance

## Pendahuluan
Kelompok ikan hias yang banyak digemari  pembudidaya  berasal  dari genus  Carassius  yaitu  mas  koki ( Carassius  auratus, Linnaeus,  1758) yang merupakan komoditas ikan hias air tawar yang memiliki corak warna dan  bentuk  tubuhnya  yang  menarik (Rosid et  al .,  2019;  Saha  & Bandyopadhyay, 2020; Marlianingrum et  al .,  2022).  Selain itu, mas koki juga memiliki harga jual yang  tinggi  sehingga  budidaya  mas
* E-mail: munti.sarida@fp.unila.ac.id
1 Jurusan Perikanan dan Kelautan Fakultas Pertanian Universitas Lampung Jl. Prof. Soemantri Brodjonegoro No. 1 Gedong Meneng Bandar Lampung 35145
koki semakin banyak dan berkembang. Semakin banyak usaha budidaya mas  koki  maka  akan  semakin  besar juga  tantangan  yang  dihadapi  oleh para pembudidayanya. Salah satunya adalah terkait reproduksi awal/matang gonad pertama kali pada mas koki yang tergolong cukup lama (Fajrin,  2012;  Al-Khalaifah et  al .,
2020).  Menurut  Salas  &  Bustamante (2007) mas koki mencapai kematangan  seksual  awal  pada  usia 225  hari  atau  kisaran  7-8  bulan
dengan  derajat  pembuahan  mas  koki yang  berkisar  antara  50-60  %  dan derajat penetasan mas koki sekitar 40- 50  %  (Ginting et  al .,  2014).  Hal  ini
diduga karena adanya ketidak seimbangan antara nutrisi dan lingkungan yang diperoleh ikan untuk memenuhi kebutuhan reproduksi awal.  Dimana  diketahui  bahwa fisiologi reproduksi ikan diselaraskan dengan  nutrisi,  sosial,  dan  faktor lingkungan (Reza et al ., 2013).
Semua vertebrata, termasuk ikan, menghasilkan  gonadotropin  (GH), hormon gonadotropin tipe I ( Follicle- stimulating  hormone ,  FSH)  dan hormon gonadotropin tipe II
( Luteinizing  hormone ,  LH),  dan  dari kelenjar  hipofisis  dan  keduanya adalah pengatur utama reproduksi dan perkembangan gonad. Pada ikan, fase awal gametogenesis, seperti spermatogenesis  dan  vitellogenesis, diatur  oleh  FSH,  sedangkan  proses pematangan  akhir,  seperti  ovulasi, pematangan  oosit,  produksi  sperma, dan  produksi  sperma,  adalah  fungsi dari  LH  (Kobayashi et  al .,  2006; Yaron et al ., 2003; Yaron & Levavi- Sipan,  2011;  Al-Khalaifah et  al ., 2020). Sehingga dengan tidak
seimbangnya  nutrisi  dan  lingkungan yang  diperoleh  ikan  mas  koki menyebabkan  proses  maturasi  tidak terjadi/terhambat  dan  menyebabkan ikan  tidak  melakukan  pemijahan Selain  itu,  energi  metabolik  yang signifikan dibutuhkan selama gametogenesis pada betina dan jantan untuk menghasilkan ratusan telur dan miliaran  sperma.  Variasi  musiman dikendalikan  oleh  hormon  dengan kendali  aksis  antara  otak-hipofisis- gonad dan disertai dengan perubahan metabolisme yang signifikan.  Hal ini didukung  oleh  adanya  hubungan
antara GnRH dan GnIH ( Gonadotropin  Inhibiting  Hormone )
adalah salah satu hormon saraf utama yang  mengatur  kontrol  pertumbuhan dan reproduksi timbal balik (Ladisa et al ., 2021). Salah satu upaya untuk mengatasi permasalahan tersebut adalah dengan penambahan kroto dan hormon oocyte developer . Selama ini pemanfaatan kroto di Indonesia masih sebatas untuk pakan burung berkicau dan umpan memancing ikan (Prayoga, 2013). Penelitian sebelumnya  kroto  dijadikan  tepung dan  diberikan  pada  ikan  patin  siam ( Pangasionodon hypophthalmus ) (Waspada, 2012). Hasil yang didapat tepung kroto mempengaruhi fekunditas patin siam karena mengandung protein dan asam lemak yang cukup tinggi. Sementara untuk pemberian kroto  segar  dalam  meningkatkan performa  reproduksi  ikan  sampai sejauh  ini  belum  ada  sedangkan Menurut  Tomasoa et  al .  (2018) oocyte developer dapat mempercepat proses  pematangan  gonad  maupun pematangan  kembali  gonad  dari beberapa jenis ikan. Penelitian maturasi  ikan  menggunakan oocyte developer telah  banyak  dilakukan salah satunya pada synodontis
( Synodontis sp.)  (Dhewantara  & Rahmatia,  2017)  dan  hasil  yang didapat  adalah oocyte  developer mempengaruhi fekunditas relatif ikan synodontis.  Oleh  karena  itu  perlu dipelajari  apakah  reproduksi  awal mas  koki  dapat  diperbaiki  melalui pemberian kroto segar, oocyte developer dan kombinasi keduanya. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengevaluasi pemberian kroto, oocyte  developer dan  kombinasi
keduanya terhadap fekunditas relatif,
derajat pembuahan dan derajat penetasan  mas  koki  betina  serta menentukan  perlakuan  terbaik  untuk meningkatkan fekunditas relatif,
derajat pembuahan dan derajat penetasan mas koki betina.

## Metode
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada September  2019  sampai  Maret  2020 di Laboratorium Produktivitas Perairan,  Jurusan  Perikanan  dan Kelautan, Fakultas Pertanian Universitas  Lampung.  Penelitian  ini menggunakan  indukan  mas  koki berumur  5  bulan  dengan  berat  rata rata 14,69 ± 3,69 g sebanyak 60 ekor, kroto segar, oocyte developer , air dan putih telur. Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap  2  faktor  yaitu  Faktor  A:
Kroto  0  g/kg  ikan  dan  30  g/kg  ikan dan  Faktor  B: oocyte  developer 0 ml/kg pakan dan 0,5 ml/kg pakan Pemeliharaan  ikan  dilakukan
dalam  akurium  yang  berisi  5  ekor dengan  volume  air  30  l.  Kemudian pembuatan pakan perlakuan dilakukan  dengan  mencampurkan larutan fisiologis (5% dari total pakan yang  akan  diberikan),  putih  telur fisiologis  dan oocyte  developer kemudian  di  homogenkan.  Pakan perlakuan  disemprot  hingga  rata. Kemudian, dikeringkan anginkan lalu dimasukkan  pakan  kedalam  plastik zip.  Pemberian  pakan  diberikan dengan  FR  3%  selama  2  x  sehari selama  5  minggu.  Setelah  itu  diberi pakan  tanpa  perlakuan  sebanyak  dua kali sehari selama tiga minggu dengan
metode ad satiation . Selama penelitian  sampling  dilakukan  pada minggu  ke-2,  minggu  ke-4  dan
minggu  ke-8  masa  pemeliharaan. Jumlah  ikan  yang  diambil  saat sampling  adalah  1  ekor  per  ulangan. Langkah yang dilakukan saat sampling  adalah  ikan  dibius  dengan minyak  cengkeh  dengan  dosis  0,25 ml/lair sampai ikan pingsan kemudian ikan  ditimbang  bobot  tubuh  dan diukur panjang  tubuhnya.  Lalu dibedah  menggunakan  pisau  bedah dan diambil gonadnya.

## Fekunditas relatif
Penghitungan  fekunditas  relatif adalah  dengan  gonad  ditimbang kemudian  diambil  5  bagian  telur secara  acak  dari  satu  gonad  untuk dijadikan  gonad  contoh.  Gonad contoh ditimbang, jika sudah ditimbang,  dihitung  volume  gonad tersebut.  Gonad  contoh  diencerkan menggunakan aquades 10 ml kemudian  diambil  sebanyak  1  ml menggunakan  pipet  tetes.  Kemudian hitung  jumlah  telur  yang  ada  pada  1 ml  kemudian  dimasukkan  ke  dalam rumus:
Fr = (n × Wt/Ws) 𝐵𝑊

## Derajat  pembuahan  (Fertilization
Rate, FR)
FR dihitung menggunakan rumus berikut:
FR= ∑Telur terbuahi (butir)
∑Telur yang Dihasilkan (butir) 𝑥100
Derajat  penetasan  (Hatching  Rate, HR)
HR dapat dihitung menggunakan rumus berikut:
HR = ∑Telur yang Menetas (butir) ∑Telur yang Dibuahi (butir) 𝑥100

## Analisis data
Analisis  data  untuk  fekunditas
relatif menggunakan SAS 9.4.
Apabila  berbeda  nyata  diuji  lanjut dengan  uji  duncan  pada  tingkat kepercayaan  95%.  Sedangkan  data
FR dan HR diuji menggunakan uji Z.

## Hasil dan Pembahasan

## Fekunditas Relatif
Pengaruh  faktor  K  (kroto)  dan faktor O ( oocyte developer ) terhadap fekunditas  relatif  mas  koki  betina tersaji dalam Tabel 1.
Tabel 1. Pengaruh faktor K (kroto) dan O (PMSG+AD/Oodev) terhadap fekunditas relatif mas koki betina (Butir/kg induk) Fekunditas Relatif (Butir/kg induk) Minggu ke - Faktor Kroto Faktor Oocyte developer K2 K1 O2 O1 2 5053,47±5894, 93 a 4822,36±3421, 79 a 3083,43±2868, 56 a 6464,06±5169, 26 a 4 2288,89±848,3 1 a 2419,09±619,2
4 a 2744,06±684,4 7 a 1963,92±528,7 6 a 8 1722,07±384,5 5 a 2102,91±1069, 01 a 1637,19±514,1 9 a 2187,79±965,0 8 a
Keterangan: Huruf superskrip yang berbeda pada baris dan faktor yang sama menunjukkan pengaruh perlakuan yang berbeda nyata (p<0,05)
Nilai fekunditas relatif mas koki betina  pada  minggu  ke-0  masa pemeliharaan adalah sebesar 1762,60 ±1024,13 butir/kg  induk.  Hasil analisis statistik menunjukkan bahwa faktor K (kroto) dan faktor O ( oocyte developer ) tidak berpengaruh terhadap  fekunditas  relatif  mas  koki betina  selama  8  minggu  masa pemeliharaan. Hal ini dapat disebabkan karena dosis kroto belum cukup untuk mempengaruhi fekunditas  pada  ikan.  Asam  lemak berfungsi sebagai prekusor
metabolisme reproduksi yang memicu hormon prostaglandin. Prostaglandin tersebut berperan dalam  kontraksi  dinding  gonad sehingga  telur  dapat  keluar,  apabila jumlah  prostaglandin  kurang  atau lebih  maka  asam  lemak  tidak berpengaruh terhadap fekunditas
(Noviantoro et  al .,  2015).  Nilai fekunditas  relatif  mas  koki  betina interaksi faktor K (kroto) dan faktor O ( oocyte  developer )  tersaji  dalam Tabel 2.
Tabel 2. Interaksi faktor K(kroto) dan O (PMSG+AD/Oodev) terhadap fekunditas relatif mas koki betina (Butir/kg induk)
Fekunditas Relatif (Butir/kg induk)
Minggu
ke- Perlakuan
K 1 O 1 K 2 O 1 K 1 O 2 K 2 O 2 2 5407,22±409 9,77 a 7520,89±682 9,71 a 4237,50±338
2,00 a 1352,33±222 ,97 b 4 2090,17±552 ,10 a 1837,67±588
,43 a 2748,01±573
,73 a 2740,11±917
,63 b
8 2890,58.6±8 65,61 a 1485,00±312 ,15 b 1315,24±496 ,35 b 1959,14 ± 321,95 ab
Keterangan:  Huruf  superskrip  yang  berbeda  pada  baris  yang  sama  menunjukkan  pengaruh  perlakuan  yang berbeda nyata (p<0,05)
Nilai fekunditas relatif mas koki betina  pada  minggu  ke-0  masa pemeliharaan adalah sebesar 1762, 60
±1024,13 butir/kg  induk.  Hasil analisis statistik menunjukkan bahwa interaksi faktor K (kroto) dan faktor O (PMSG+AD  atau  Oodev)  tidak berpengaruh  pada  fekunditas  relatif mas  koki  betina  di  minggu  ke-2  dan minggu  ke-4  masa  pemeliharaan. Minggu  ke-8  masa  pemeliharaan, perlakuan K 1 O 1 berbeda nyata dengan perlakuan  K 2 O 1 dan  perlakuan  K 1 O 2 tetapi  tidak  berbeda  nyata  dengan perlakuan  K 2 O 2 .  Perlakuan  K 2 O 2 tidak berbeda nyata dengan perlakuan K 2 O 1 dan perlakuan K 1 O 2 . Perlakuan K 2 O 1 tidak  berbeda  nyata  dengan perlakuan K 2 O1 dan perlakuan K 2 O 2 . Diketahui  secara  keseluruhan  nilai fekunditas  relatif  mas  koki  betina pada perlakuan K 2 O 2 dikatakan stabil,
dibandingkan dengan
perlakuan
lainnya yang meningkat sangat pesat pada dua minggu masa pemeliharaan namun  justru  menurun  dari  minggu ke-4  hingga  minggu  ke-8  masa pemeliharaan. Stabilnya
nilai
fekunditas  relatif  pada  perlakuan K 2 O 2 ini  disebabkan  oleh  dosis perlakuan  yang  optimal  karena merupakan kombinasi dari kroto yang mengandung  asam  lemak  dan  juga oocyte  developer yang  mengandung
FSH  dan  LH.  LH  pada oocyte developer berfungsi untuk merangsang  proses  ovulasi  dan pemijahan  pada  induk  ikan  betina (Wadi et al ., 2018). Sementara asam lemak dapat menghasilkan fekunditas ikan tertinggi seperti yang dilaporkan oleh Fadli et al ., (2016). Hal ini dapat dikatakan  bahwa  asam  lemak  jika berdiri  sendiri  dengan  dosis  yang kurang maka peran asam lemak tidak terlihat  sementara  jika  ada tambahan energi seperti hormon oocyte developer maka  dapat  berperan menghasilkan fekunditas yang relatif stabil walaupun tidak sebaik kontrol.

## Derajat Pembuahan-Penetasan
Perhitungan  derajat  pembuahan dan  derajat  penetasan  dapat  dilihat pada Tabel 3.
Tabel 3. Derajat pembuahan dan derajat penetasan mas koki ( Carassius auratus) betina Parameter Derajat pembuahan dan pentasan (%) Perlakuan K 1 O 1 K 1 O 2 K 2 O 1 K 2 O 2 FR 71,50 c 73,00 bc 75,00 b 71,50 c HR 48,65 d 58,75 b 52,99 c 90,24 a
Keterangan:   Huruf superskrip yang berbeda pada baris yang sama menunjukkan hasil yang berbeda nyata (Z ˃ 1,645) berdasarkan hasil uji Z.
Derajat pembuahan dari tertinggi ke terendah diperoleh pada perlakuan
K 2 O 2 sebesar  88%,  perlakuan  K 2 O 1 sebesar 75%, perlakuan K 1 O 2 sebesar
73%  dan  perlakuan  K 1 O 1 sebesar 71,5%. Hasil uji proporsi menunjukkan bahwa perlakuan K 2 O2 berbeda  nyata  dengan  perlakuan
K 2 O 1 , perlakuan K 1 O 2 , dan perlakuan K 1 O 1 . Perlakuan K 2 O 1 berbeda nyata dengan  perlakuan  K 1 O 1 tetapi  tidak berbeda  nyata  dengan  perlakuan K 1 O 2 . Perlakuan K 1 O2 tidak berbeda nyata dengan perlakuan K 1 O 1 . Derajat  penetasan  dari  tertinggi ke  terendah  adalah  perlakuan  K 2 O 2 sebesar  90,24%,  perlakuan  K 1 O2 sebesar  58,75%,  perlakuan  K 2 O 1 sebesar  52,99%  dan  perlakuan  K 1 O 1 sebesar  48,65%.  Hasil  uji  proporsi menunjukkan bahwa perlakuan K 2 O 2 berbeda  nyata  dengan  perlakuan K 1 O2, perlakuan K 2 O 1 , dan perlakuan K 1 O 1 . Perlakuan K 1 O 2 berbeda nyata dengan perlakuan K 2 O 1 dan perlakuan  K1O1.  Perlakuan  K 2 O 1 berbeda  nyata  dengan  perlakuan K 1 O 1 . Pada derajat
pembuahan,
perlakuan K 2 O 2 berbeda nyata dengan perlakuan  lainnya  dan  merupakan perlakuan yang terbaik. Hal ini karena kerjasama  dari  kroto  dan oocyte developer . Kroto mengandung asam lemak  sedangkan oocyte  developer mengandung  FSH  dan  LH.  Asam lemak merupakan aspek nutrisi pakan yang  penting  dalam  meningkatkan kualitas telur sehingga telur lebih siap dibuahi  dan  berpengaruh  terhadap derajat  pembuahan  (Suhenda  & Samsudin,  2009).  Apabila  kualitas telur  baik  maka  derajat  pembuahan telur  juga  akan  baik.  Menurut Burmansyah et  al .  (2013)  salah  satu faktor  yang  dapat  mempengaruhi derajat  pembuahan  adalah  kualitas telur.
Oocyte developer memiliki kandungan untuk meningkatkan
kualitas  telur  yang  dihasilkan,  tetapi pada  penelitian  ini    perlakuan  yang hanya  diberikan Oocyte  developer (K 1 O2)  tidak  berbeda  nyata  dengan kontrol (K 1 O 1 ) maupun kroto (K 2 O 1 ). Ini  diduga  bahwa  dosis oocyte developer belum cukup untuk meningkatkan  kualitas  telur  dengan optimal.  Pemberian  hormon  dengan dosis  yang  rendah  tidak  akan memberikan efek yang positif, sedangkan  pemberian  hormon  yang terlalu  tinggi  akan  memberikan  efek negatif atau negative feedback secara hormonal  terhadap  ikan  (Debnanth 2010).
Derajat  pembuahan  telur  mas koki  betina  kombinasi  PMSG+AD dengan  kroto  hasilnya  lebih  optimal. Hal ini mengindikasikan bahwa asam lemak lebih berperan terhadap derajat pembuahan telur dibandingkan dengan PMSG+AD. Hal ini didukung dari penelitian Waspada (2012) yang menyatakan bahwa derajat
pembuahan  patin  siam  yang  diberi penambahan  tepung  kroto  lebih  baik bila dibandingkan dengan kontrol.
Pada derajat penetasan telur mas koki betina, perlakuan  K 2 O 2 menjadi perlakuan  yang  terbaik.  Hal  ini dikarenakan  sinergi  dari  kroto  dan oocyte  developer .  Asam  lemak  di dalam kroto berfungsi sebagai prekursor prostaglandin yang
membuat kualitas telur menjadi baik, tidak  mudah  rusak  dan  telur  mudah untuk  menetas  sehingga  derajat penetasan  menjadi  lebih  optimal (Nainggolan,  2015).  Hasil  penelitian Febnikayani et al . (2018) menyatakan bahwa  asam  lemak  berpengaruh terhadap  derajat  penetasan  telur  lele. Oocyte  developer mengandung  FSH yang  berfungsi  untuk  kematangan telur  dan  LH  yang  berfungsi  untuk
merangsang ovulasi (Septiani, 2019). FSH  dan  LH  mampu    meningkatkan folikel  sehingga  folikel  berkembang dan  daya  tetas  telur  juga  meningkat (Lubzens et  al .,  2010;  Aziz  &
Kalesaran, 2017). Kroto tidak mengandung  FSH  dan  LH  sehingga persentase K 1 O2 lebih optimal dibandingkan  K 2 O 1 pada  derajat penetasan. Rendahnya persentase K 2 O 1
dibandingkan  K 1 O 2 pada  derajat penetasan  karena  K 1 O 2 dari  asam lemak  hanya  sampai  ke  derajat pembuahan.  Izquierdo et  al .,  (2001) menyatakan  bahwa  pada  beberapa spesies  ikan,  nutrisi  seperti  asam lemak dan vitamin hanya berpengaruh  terhadap  kualitas  telur dan  derajat  pembuahan  sementara menurut Sinjal (2014) hormon memberikan respon yang baik terhadap reproduksi induk lele dumbo baik  terhadap  tingkat  kematangan gonad,  tingkat  fertilisasi,  daya  tetas telur, dan sintasan larva.

## Kesimpulan dan Saran
Kesimpulan  yang  diperoleh  dari penelitian ini adalah faktor K (kroto) dan  faktor  O  (PMSG+AD/Oodev) selama 8 minggu masa pemeliharaan tidak berpengaruh terhadap fekunditas  relatif  mas  koki  betina.
Interaksi keduanya pada minggu ke-8 masa  pemeliharaan  mempengaruhi derajat  pembuahan-penetasan,  dan fekunditas  relatif  mas  koki  betina. Sementara  perlakuan  terbaik  pada penelitian ini adalah  perlakuan  K 2 O 2 dengan  dosis  kroto  sebesar  30  g/kg ikan dan oocyte developer sebesar 0,5 ml/kg pakan.

## Daftar Pustaka
Al-Khalaifah,  H.S.,  Amer,  S.A.,  Al- Sadek,  D.M.M.,  Khalil,  A.A., Zaki,  E.M.,  &    El-Araby,  D.A. 2020.  Optimizing  the  Growth,
Health, Reproductive Performance, and Gonadal Histology  of  Broodstock  Fantail Goldfish  ( Carassius  auratus ,  L.) by  Dietary  Cacao  Bean  Meal. Animals (Basel). Vol 10(10):1808 . doi: 10.3390/ani10101808.
Aziz,  E.A.,  &  Kalesaran,  O.  2017. Pengaruh  Ovaprim,  Aromatase
Inhibitor,  dan  Hipofisa  terhadap kualitas  Telur  Ikan  Lele  Dumbo ( Clarias gariepinus ). Jurnal Budidaya  Perairan . Vol  5(1):  12- 20.
Burmansyah,  Muslim,  &  Fitrani,  M.
2013.  Pemijahan  Ikan  Betok ( Anabas  testudineus )  Semi  Alami dengan Sex Ratio Berbeda. Jurnal Akuakultur Rawa Indonesia . Vol 1 (1) :23-33. Debnanth S. 2010. A Review On The Physiology Of Insulin-Like Growth Factor-I (IGF-I) Peptide in Bony  Fishes  and  Its  Phylogenetic Correlation in 30 Different Taxa of
14 Families of Teleosts. Advances in  Environmental  Biology.  Vol  5 (1):3 1-52. Dhewantara,  Y.L.,  &  Rahmatia,  F. 2017. Rekayasa Maturasi Menggunakan  Hormon  Oodev terhadap Ikan Synodontis ( Synodontis sp). Jurnal  Akuatika Indonesia. Vol 2 (1):35-42 Fadli, A., Nuraini, & Alawi, H. 2016. Pengaruh  Pemberian  Jenis  Pakan Yang  Berbeda  terhadap  Mutu Gonad  Calon  Induk  Ikan  Ingir-
ingir  ( Mystus  nigriceps ). Journal Online Mahasiswa Fakultas
Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan
Universitas Riau. Vol 3(2): 1-13.
Fajrin,  C.N.  2012.  Penambahan
Ekstrak Tauge dalam Pakan untuk Meningkatkan Keberhasilan Pemijahan Ikan Mas Koki ( Carassius auratus ). Jurnal
Perikanan  dan  Kelautan.  Vol  3 (3):51-60.
Febnikayani, S., Rostika, R., Agung, M.U.K.,  &  Herawati,  T.  2018. Pengaruh  Penambahan  Tepung Biji Kecipir ( Psophocarpus tetragonolobus ) pada Pakan Komersial terhadap Tingkat Kematangan  Gonad  Ikan  Gurame ( Osphronemus  gouramy ). Jurnal Perikanan  dan  Kelautan.  Vol  9 (2):103-111.
Ginting, A.S., Usman, & Dalimunthe, M.  2014.  Pengaruh  Padat  Tebar terhadap Kelangsungan Hidup dan Laju Pertumbuhan Ikan Mas Koki ( Carassius auratus ) yang Dipelihara  di  Sistem  Resirkulasi. Jurnal Aquacostmarine. Vol 5 (4): 104-113. Izquierdo,  M.S.,  Fernandez,  P.H.,  & Tacon,  A.G.J.  2001.  Effect  of Broodstock on Reproductive
Performance in Fish. Aquaculture. Vol 19: 25-42.
Kobayashi, M., Morita, T., Ikeguchi, K.,  Yoshizaki,  G.,  Suzuki,  T.,  &
Watabe, S. 2006. In vivo
biological activity  of  recombinant goldfish  gonadotropins  produced by baculovirus in silkworm larvae. Aquaculture. Vol (256): 433–442 . Ladisa,  C.,  Ma,  Y.,  &  Habibi,  H.R. 2021. Seasonally related metabolic changes  and  energy  allocation associated with growth and reproductive phases in the liver of male goldfish ( Carassius auratus ). Journal Proteomics. Vol
241):104237 . doi: 10.1016/j.jprot.2021.104237. Lubzens,  E.,  Young,  G.,  Bobe,  J., & Cerdà,  J.  2010.  Oogenesis  in teleosts: How fish eggs are formed. General and Comparative Endocrinology . Vol  (165):  367–
389 . Marlianingrum  P.R.,  Suhana,  I.S. 2022.  Ornamental  fish  export during  the  Covid-19  pandemic. AACL Bioflux . 15(6):2999-3011 . Nainggolan,  A.,  Sudrajat,  A.O.,
Utomo,  B.P.,  &  Harris,  E.  2015. Peningkatan  Kinerja  Reproduksi, Kualitas  Telur  dan  Larva  melalui Suplementasi Spirulina Dikombinasikan  dengan  Injeksi Oocyte developer pada Induk Ikan
Lele  ( Clarias sp.)  Betina. Jurnal Riset  Akuakultur.  Vol  10(2):199- 210.
Noviantoro,  A.,  Sudaryono,  A.,  & Nugroho,  R.A.  2015.  Pengaruh Pemberian  Omega-3  dan  Klorofil dalam Pakan Terhadap Fekunditas dan Derajat Penetasan Benih Ikan Nila ( Oreochromis niloticus ). Journal of Aquaculture Management and Technology. Vol 4(4): 95-100.
Prayoga,  B.  2013. Kupas  Tuntas Budidaya  Kroto  Cara  Modern .
Jakarta. Penebar Swadaya.
Reza,  A.,  Rakhi,  S.,  Hossen,  M., Takahashi,  K.,  &  Hossain,  Z. 2013. Enhancement of reproductive performances of Gangetic  leaffish,  Nandus  nandus through up regulation of serum Ca 2+ concentration, improved morphological  alteration  of  liver and ovary with dietary polyunsaturated  fatty  acids.  Fish The  Journal  of  Physiology  and
Biochemistry . Vol 39: 779–791 .
Rosid,  M.M.,  Yusanti,  I.A.,  &
Mutiara, D. 2019. Tingkat Pertumbuhan dan Kecerahan Warna  Ikan  Komet  ( Carassius auratus ) dengan Penambahan
Konsentrasi  Tepung Spirulina sp. pada  Pakan. Jurnal  Ilmu-ilmu Perikanan dan Budidaya Perairan. Vol 14 (1): 37-44. Saha, M. & Bandyopadhyay, P. 2020. In  vivo  and  in  vitro  antimicrobial activity  of  phytol,  a  diterpene molecule, isolated and characterized from Adhatoda vasica  Nees.  (Acanthaceae),  to control severe bacterial disease of ornamental fish, Carassius auratus , caused by Bacillus licheniformis PKBMS16. Microbial Pathogenesis . Vol(141):
103977 .
10.1016/j.micpath.2020.103977. Salas,  A.A.O.  &  Bustamante,  H.R. 2007.  Initial  Sexual  Maturity  and Fecundity of the Goldfish Carassius  auratus  (Perciformes  : Cyprinidae) Under Semi– Controlled  Conditions. Article  in Revista  de  biologia  tropical.  Vol
54 (4): 1113-1116.
Septiani, A. 2019. Induksi Pematangan  Gonad  Ikan  Sidat (Anguilla bicolor bicolor) Menggunakan Oodev dan Ekstrak Kelenjar  Hipofisa  Ikan  Lele . (Skripsi). Bogor: Fakultas
Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan. Institut Pertanian Bogor.
Sinjal,  H.,  Ibo,  F.,  &  Pangkey,  H.
2014.Evaluasi  Kombinasi  Pakan dan  Estradiol  17  Β  terhadap Pematangan  Gonad  dan  Kualitas
Telur  Ikan  Lele  Dumbo  ( Clarias gariepinus ). Jurnal LPPM Bidang Sains dan Teknologi. Vol 1(1): 97- 112.
Suhenda,  N.  &  Samsudin,  R.  2009. Pematangan  Gonad  Ikan  Baung melalui  Perbaikan  Pakan  Induk (Dempond). Laporan Seminar Hasil  Riset  T.A.  Balai  Riset
Perikanan Budidaya Air Tawar.
Tomasoa,  A.M.,  Azhari,  D.,  &
Balansa,  W.  2018.  Pertumbuhan dan Pematangan Gonad Ikan Giru Amphiprion  clarki yang  diberi Pakan Mengandung Hormon Oodev. Jurnal Teknologi Perikanan dan Kelautan. Vol 9(2) :163-168. Wadi,  H.,  Yusnaini.,  &  Idris,  M. 2018.  Respon  Pemberian  Ekstrak Hipofisa  Ayam  Broiler  dengan Dosis  Berbeda  Terhadap  Ovulasi Ikan Lele Dumbo ( Clarias gariepinus ) Betina. Media Akuatika. Vol 3(2): 617-629. Waspada, A.J. 2012. Performa Reproduktif  Ikan  Patin  Siam ( Pangasius  hypopthalmus )  dalam Merespons  Tingkat  Penambahan Tepung  Kroto  pada  Formulasi Pakan  Berbasis  Bahan  Baku Lokal. International  Journal  of Agriculture Systems. Vol 2 (2): 47- 53.
Yaron,  Z.,  Gur,  G.,  Melamed,  P., Rosenfeld,  H.,  Elizur,  A.,  & Levavi-Sivan, B. 2003. Regulation of  fish  gonadotropins.  Int.  Rev.
Cytol., 225, 131–185.
Yaron, Z., & Levavi-Sipan, B. 2011. Endocrine  Regulation  of  Fish Reproduction.  Encyclopedia  of Fish Physiology: from Genome to Environment  . Academic  Press. Vol 2: 1500-1508.