## S IFAT FISIOLOGI LATEKS TANAMAN KARET (Hevea brasiliensis) AKIBAT PEMBERIAN STIMULAN ORGANIK
Latex-Physiology Characteristics of  Rubber Tree (Hevea brasiliensis) as Response to Organic Latex-Stimulant Applications
1 2 1
Muhamad Rizqi Darojat , Radite Tistama , dan Junaidi
1 Balai Penelitian Sungei Putih, PO BOX 1415 Medan 20001
2 Pusat Penelitian Karet Sembawa, PO BOX 1127 Palembang 30001
Email: mr.darojat@gmail.com
Diterima 10 Juni 2020/ Direvisi 16 Juli 2020   / Disetujui 30 Juni 2020

## Abstrak
Teknologi  stimulan  lateks  masih  sangat rendah  diadopsi  oleh  petani  karet  rakyat karena   dikhawatirkan dapat membahayakan tanaman dan memiliki harga jual yang cukup tinggi.  Ekstrak  kulit  buah  klimakterik  dapat digunakan  sebagai  stimulan  lateks  organik karena  mengandung  zat  etilen.  Penelitian  ini bertujuan mengetahui pengaruh jenis stimulan yaitu kovensional (berbahan aktif  etefon) dan bahan  organik  (ektrak  kulit  buah  pisang  dan nanas) terhadap produksi dan kondisi fisiologi lateks  tanaman  karet.  Penelitian  ini menggunakan rancangan tersarang dua tahap ( two-stage  nested  design )  yaitu:  jenis  klon    (PB 260, IRR 118, IRR 39, dan IRR 42), dan jenis stimulan (0% tanpa stimulan, Ethrel 2,5%, SP- 1, ekstrak kulit buah pisang, dan ekstrak kulit nanas).  Stimulan  berbahan  Ethrel  (ET2,5% dan  SP-1)  dan  stimulan  ekstrak  pisang menghasilkan  produksi  lateks  lebih  tinggi dibanding dengan stimulan ekstrak nanas dan kontrol. Stimulan organik memiliki nilai TSC lebih  tinggi  pada  klon  IRR  118  dan  PB  260. Hasil  diagnosa  lateks  menunjukkan  stimulan konvensional  maupun  organik  menghasilkan nilai sukrosa, fosfat anorganik (Pi), dan thiol yang berfluktuatif, namun masih berada pada kisaran  batas  normal.  Kadar  sukrosa  dan  Pi cender ung  menur un  dan  kadar  thiol cenderung  meningkat  terhadap  kontrol dengan kisaran nilai sebesar  0,72 – 1,76 mM, 0,06  –  0,13  mM,  dan  0,8  –  6,3  mM,  secara berturut-turut.  Jenis  stimulan konvensional menghasilkan  nilai  penurunan  kadar  thiol
lebih tinggi sehingga relatif  memberikan efek fisiologis  lebih  berat  dibandingkan  dengan stimulan  organik. Hasil  ini  menunjukkan bahwa  stimulan  Ethrel  maupun  stimulan organik  tidak  memberikan  efek  negatif terhadap  kondisi  fisiologi  lateks  tanaman karet.
Kata kunci: ekstrak kulit buah pisang, ekstrak kulit  nanas  etefon,  fisiologi  lateks,  stimulan lateks

## Abstract
Nowadays, latex stimulant is rarely adopted by rubber smallholders since it is unaffordable and has potential  risks  for  the  tree.  Organic  material extracted from climacteric fruit rinds has been known to  contain  ethylene  so  that  it  can  be  used  as  an organic latex stimulant. This study aimed to observe the  effect  of   latex  stimulants  i.e.  conventional (ethephon-based)  and  extract  fruit  rinds  (organic- based)  on  latex  yield  and  latex  physiological parameters. The experiment was carried out using two-stage nested design with five types of  stimulant applications and three replications. Plant materials used four rubber tree clones i.e. IRR 118, PB 260, IRR  39,  and  IRR  42  planted  in  2006.  Ethephon- based stimulants (ET 2.5% and SP-1) and extracted banana-rind  stimulants  resulted  in  higher  latex production  compared  with  pineapple-rind stimulants and control. However organic stimulants (extracted  banana  and  pineapple)  had  high  total solid content (TSC) on IRR 118 and PB 260 clones. Latex diagnoses showed that both Ethrel-based and organic stimulants had fluctuated levels in sucrose,
Pi,  and  thiol  content,  but  in  the  normal  range. Sucrose  and  Pi  contents  tended  to  decrease  and contrarily with thiol content in range of  0,72 – 1,76 mM,  0,06  –  0,13  mM,  dan  0,8  –  6,3  mM, respectively.  Ethephon-based  stimulants,  relatively, had  a  higher  thiol  content  compared  to  organic stimulants.  These  results  indicate  that  neither Ethrel-based stimulants nor organic stimulants have not a negative effect on the latex physiological rubber trees conditions.
Keywords: extracted banana rinds, latex physiology, latex stimulants, ethephon

## Pendahuluan
Produktivitas  tanaman  karet  Indonesia secara  nasional  masih  tergolong  rendah dibandingkan  negara-negara  penghasil  karet alam  lainnya  yaitu  858  kg/ha/tahun.  India menempati  urutan  pertama  sebesar  1.986 kg/ha/tahun,  disusul  Vietnam  1.702 kg/ha/tahun,  Thailand  1.570  kg/ha/tahun, dan  Srilanka  1.107  kg/ha/tahun  (Food  and Agriculture Organization, 2018). Menurut Li et  al .  (2014)  produktivitas  tanaman  karet ditentukan  oleh  beberapa  faktor  meliputi lingkungan  tumbuh  (iklim,  nutrisi  tanah, penyakit), kualitas tanaman (klon, kejaguran, kemurnian) dan teknis budidaya (sistem sadap, p e m e l i h a r a a n ,   m a n a j e m e n   k e b u n ) . P r o d u k t iv i t a s   k a r e t   n a s i o n a l   s a n g a t dipengaruhi oleh proporsi luasan perkebunan karet  Indonesia  yang  sebagian  besar  berupa perkebunan  karet  rakyat  ( smallholder ), mencapai 85% dari total luas tanaman karet. Sementara  itu,  adopsi  teknologi  budidaya tanaman karet oleh petani karet rakyat masih rendah  yaitu  hanya  sebesar  6%  (Huda et  al ., 2013),  sehingga  menyebabkan  produktivitas karet  rakyat  hanya  sebesar  965  kg/ha/tahun pada  tahun  2018  (Badan  Pusat  Statistik, 2019a).
Sistem pemanenan lateks memiliki peranan penting  terhadap  capaian  produksi  karet (Priyadarshan,  2017).  Sistem  pemanenan lateks,  atau  biasa  disebut  sistem  sadap, meliputi beberapa variabel yaitu posisi panel, panjang  irisan,  arah  sadapan,  frekuensi
sadapan,  serta  frekuensi  dan  konsentrasi s t i mu l a n .   Ko m b i n a s i   a n t a r   va r i a b e l menentukan  produksi  aktual  dan  kumulatif, umur  ekonomi  tanaman,  dan  tingkat  biaya penyadapan.  Saat  ini,  stimulan  lateks  telah menjadi  standar  baku  dalam  sistem  sadap  di perkebunan  besar  negara  maupun  swasta. Hasil  penelitian  Kudaligama et  al. (2017) menunjukkan  bahwa  kombinasi  frekuensi sadap dan stimulan lateks dapat meningkatkan produksi  lateks  5%  -  19%  dibandingkan dengan  sistem  sadap  tradisional  tanpa stimulan.  Namun  demikian,  teknologi  ini m a s i h   b e l u m   b a n ya k   d i a d o p s i   o l e h perkebunan  rakyat.  Mukhlis et  al .  (2011) melaporkan bahwa petani karet rakyat masih menggunakan  sistem  budidaya  tradisional (tanpa stimulan) yang diwariskan secara turun temurun  sehingga  produksi  karet  yang dihasilkan masih belum optimal.
Gohet et  al .  (2016)  melaporkan  bahwa petani  karet  rakyat  cenderung  menolak teknologi  baru  karena  mereka  khawatir  hal tersebut  memiliki  efek  negatif   terhadap tanaman.  Petani  khawatir  bahwa  stimulan dapat  mengakibatkan  panel  sadap  menjadi kering  dan  tanaman  mengalami  penurunan produksi.  Alasan  lainnya  adalah  harga stimulan  yang  cukup  tinggi  menyebabkan petani  karet  rakyat  enggan  untuk  menambah beban  biaya  produksi.  Bahan  baku  stimulan lateks diperoleh secara impor, ditambah biaya pengolahan  dan  pemasaran,  menyebabkan harga stimulan ditingkat petani menjadi tinggi. Sumber  etilen  alternatif,  terutama  yang tersedia  di  sekitar  lingkungan  petani  dengan harga terjangkau, akan bermanfaat bagi petani untuk  meningkatkan  produksi  tanaman karetnya.
Etilen  merupakan  senyawa  kimia  yang terkandung  dalam  stimulan  lateks  yang berperan dalam peningkatan produksi. Secara alami,  senyawa  etilen  terkandung  dalam jaringan  tanaman  dan  meningkat  kadarnya pada jaringan buah klimakterik (jaringan yang dapat  diperam)  dewasa  untuk  proses pematangan    (Liu et  al .,  2015).  Namun demikian, penelitian jaringan tanaman sebagai sumber  etilen  alternatif   masih  belum  banyak
yang  melakukan.  Galingging et  al .  (2017) melaporkan  bahwa  kulit  buah  pisang  dapat digunakan  sebagai  alternatif   stimulan  untuk meningkatkan  produksi  lateks.  Penggunaan bahan  organik,  limbah  buah-buahan  atau bahan  lain  yang  mengandung  etilen,  sebagai stimulan  lateks  dapat  meningkatkan  nilai ekonomi  buah-buahan  tropis,  mengurangi pencemaran  lingkungan,  dan  mengurangi ketergantungan  terhadap  input  dari  luar sehingga  petani  menjadi  lebih    independen. Selain  etilen,  senyawa naphthalene  acetic  acid (NAA)  diketahui  dapat  juga  digunakan sebagai  stimulan  lateks  untuk  meningkatkan produksi  (d 'Auzac, 1989).
Penggunaan  stimulan  berperan  dalam optimalisasi  proses  pemanenan  lateks.  Selain peningkatan produksi, efek stimulan terhadap fisiologi tanaman perlu dipertimbangkan agar produktivitas tinggi dapat berkelanjutan. Salah satu  senyawa  yang  berperan  dalam  respon terhadap  cekaman  biotik  maupun  abiotik adalah asam askorbat (Das & Roychoudhury, 2014).  Penelitian  ini  bertujuan  mengetahui pengaruh  jenis  stimulan  yaitu  konvensional (berbahan  aktif   etefon)  dan  bahan  organik (limbah kulit buah pisang dan nanas) terhadap produksi dan fisiologis tanaman pada dua jenis klon yaitu metabolisme tinggi (IRR 118 dan PB 260)  dan  metabolisme  rendah  (IRR  39  dan IRR  42).  Hasil  studi  ini  sangat  bermanfaat dalam  upaya  perakitan  teknologi  stimulan alternatif   yang  efektif,  ekonomis,  dan  ramah terhadap tanaman dan lingkungan.

## Bahan dan Metode

## Bahan tanaman dan rancangan percobaan
Penelitian  dilaksanakan  di  Kebun Percobaan  Balai  Penelitian  Sungei  Putih (BPSP)  dengan  ketinggian  ±  54  m  di  atas permukaan  laut  pada  bulan  Oktober  2013 hingga  bulan  Maret  2014.  Penelitian  ini disusun  berdasarkan  rancangan  petak tersarang dua step ( two-stages nested design ) yaitu jenis klon (IRR 118, PB 260, IRR 39 dan IRR 42) dan jenis stimulan (kontrol tanpa stimulan, Ethrel,  SP1,  pisang,  dan  nanas).  Setiap
perlakuan  diulang ,  dan dengan  tiga  ulangan setiap  ulangan  terdiri  dari  4  tanaman. Tanaman yang digunakan dalam penelitian ini berumur  12  tahun  dengan  jarak  tanam  5  x  3 meter.
Stimulan  berbahan  dasar  etefon  (Ethrel 2,5%  dan  SP-1)  dihasilkan  melalui  metode pengenceran.  Ethrel  stok  10%  diencerkan dengan  perbandingan  1:3  (v/v)  untuk  Ethrel 2,5%  dan  1:4  (v/v)  untuk  stimulan  SP-1 (konsentrasi  akhir  2%)  ditambah naphtaline acetic acid (NAA) 15 ppm dan asam askorbat. Stimulan  organik  dihasilkan  melalui  metode ekstraksi berdasarkan Sinamo et al. (2015) yang dimodifikasi.  Kriteria  kulit  buah  yang digunakan  yaitu  buah  yang  telah  matang. Secara  terpisah  kulit  buah  pisang  dan  buah nanas  dipotong  kecil-kecil  kemudian dimasukan ke dalam blender dan ditambah air dengan  perbandingan  3:1  (b/b).  Kulit dihaluskan selama 10 menit. Cairan kulit buah p i s a n g   d a n   b u a h   n a n a s   d i e k s t r a k menggunakan kain kasa dengan cara diperas.
º Hasil ekstraksi disimpan pada suhu 5 C selama 14  jam  di  dalam  lemari  pendingin.  Seluruh stimulan  menggunakan  akuades  sebagai pelarut.

## Aplikasi stimulan dan pengamatan produksi
Stimulan  Ethrel  dan  SP-1  diaplikasikan dengan metode groove application (GA) dengan dosis 1 gram per pohon per aplikasi, sedangkan stimulan ekstrak kulit buah pisang dan nanas menggunakan  metode bark  application (BA) dengan  dosis  5  gram  per  pohon  per  aplikasi. A p l i k a s i   d i l a k u k a n   s e h a r i   s e b e l u m penyadapan dengan interval 2 minggu.
Penyadapan dilakukan dengan sistem S/2 d3.  Pengamatan  produksi  dilakukan  dengan mengukur volume lateks setiap perlakuan per sadap  menggunakan  gelas  ukur  (ml/p/s). Kadar  padatan  total  atau total  solid  content (TSC) diperoleh dengan metode pengeringan (oven). Lateks seberat 2 ± 0.5 g dikeringkan di dalam oven dengan suhu 60˚C selama 12 jam. Kadar  padatan  total  dihitung  melalui perbandingan  bobot  kering  dan  bobot  basah dengan rumus:

## Diagnosis lateks
Analisis  fisiologi  lateks  dilakukan  di Laboratorium  Fisiologi  dan  Genetika  Balai Penelitian  Sungei  Putih,  Medan.  Parameter fisiologi yang diamati meliputi kadar sukrosa (SUC), fosfat anorganik (Pi), dan thiol (R-SH). Serum lateks diperoleh dengan metode TCA. Lateks segar sebanyak 1 ml dicampur dengan 9 ml larutan 2,5% trichloroacetic acid (TCA) untuk mengendapkan dan menggumpalkan partikel padat  di  dalam  lateks  (karet,  protein,  dll). Serum  lateks  (cairan  berwarna  jernih) digunakan  sebagai  sampel  untuk  mengukur kadar  sukrosa,  Pi,  dan  thiol menggunakan reagen anthrone  (Dische,  1962) , reagen ammonium molibdat (Taussky & Shorr, 1953) , dan reagen  dithiobis  nitrobenzoat  (DTNB) (McMullen, 1960).

## Analisis data
Seluruh  data  dianalisis  menggunakan program  R  versi  3.4.2  ( R  Development  Core Team ). Studio R menggunakan versi 1.1.383.

## Hasil dan Pembahasan

## Produksi lateks
Jenis  stimulan  menghasilkan  respon produksi yang bervariasi pada jenis klon yang diujikan (Gambar 1). Secara umum stimulan berbahan  dasar  etefon  (Ethrel  dan  SP-1) menghasilkan  produksi  lateks  lebih  tinggi dibandingkan  dengan  kontrol  maupun stimulan  organik  (ekstrak  kulit  buah  pisang dan nanas). Stimulan Ethrel 2,5% memberikan respon  produksi  paling  tinggi  pada  seluruh klon dengan nilai rata-rata 75 ml/p/s, kecuali pada klon PB 260 respon tertinggi dipengaruhi oleh  stimulan  SP-1  (Gambar  1b).  Selain  itu klon  PB  260  dan  IRR  118  terbukti  lebih responsif  terhadap stimulan SP-1 (119 ml/p/s) dibandingkan  dengan  stimulan  Ethrel  2,5% (37  ml/p/s).  Jacob et  al .  (1989)  dan Paardekooper  (1989)    menyatakan  bahwa respon stimulan sangat bergantung pada jenis klon  dan  usia  tanaman.  Beberapa  penelitian
melaporkan bahwa klon PB 260 dan IRR 118 digolongkan ke dalam klon metabolisme tinggi (Gohet et  al .,  2019;  Herlinawati  & Kuswanhadi,  2018)  dan  diketahui  memiliki respon yang rendah terhadap aplikasi stimulan (Herlinawati & Kuswanhadi, 2013; Putranto et al ., 2015). Sebaliknya klon IRR 42 dan IRR 39 memiliki  respon  baik  terhadap  pemberian stimulan,  bahkan  pada  awal  buka  sadap (Boerhendhy, 2013). Pada penelitian ini, dosis Ethrel  yang  lebih  rendah  dan  penambahan hormon  NAA  pada  stimulan  SP-1  diduga dapat meningkatkan respon pada klon PB 260. Tupy  (1969)  melaporkan  bahwa  perlakuan NAA  sebagai  stimulan  telah  berhasil meningkatkan  produksi  lateks  pada  klon  PR 107. NAA berperan dalam peningkatan kerja enzim  invertase  yang  berhubungan  dengan penggunaan sukrosa dalam proses biosintesis karet.  Nurhayati et  al .(2017) melaporkan bahwa  dosis  100  ppm  NAA  mampu meningkatkan  produksi  lateks  sebesar  34% diatas kontrol.
Ekstrak  kulit  buah  tidak  memberikan pengaruh  nyata  terhadap  produksi  lateks. Secara  umum  stimulan  ekstrak  kulit  buah pisang memiliki rata-rata produksi lebih tinggi dengan  nilai  59,7  ml/p/s  dibandingkan dengan  stimulan  ekstrak  kulit  nanas  dan kontrol sebesar 45,8 ml/p/s dan 52,5 ml/p/s, secara  berturut-turut.  Ekstrak  kulit  buah pisang menghasilkan respon terbaik pada klon IRR  118  (Gambar  1a).  Salah  satu  faktor penentu  respon  stimulan  adalah  tingkat konsentrasi  etilen  yang  terkandung  dalam bahan stimulan (Eschbach & Lacrotte, 1989). Dalam penelitian ini, kandungan etilen dalam ekstrak  kulit  buah  pisang  dan  nanas  diduga lebih rendah dibanding Ethrel dan SP-1. Zaidi et  al .  (2016)  dan  Saraiva et  al .(2018) melaporkan  bahwa  konsentrasi  etilen  dalam ekstrak  kulit  buah  klimakterik  sangat  rendah yaitu  0,01  ppm  –  0,3  ppm.  Penurunan konsentrasi dapat terjadi karena etilen terlepas selama  proses  ekstraksi  dan  penyimpanan. Etilen  merupakan  hormon  berbentuk  gas sehingga  mudah  lepas  pada  saat  proses pematangan  buah  klimakterik  (Botton et  al ., 2018;  Pech et  al .,  2012).  Ekstrak  kulit  nanas
%TSC =                                          x 100%   (1)
Berat kering lateks Berat basah lateks
Gambar 1. Produksi lateks (ml/p/s) pada masing-masing klon yang diuji coba dengan beberapa jenis stimulan. Huruf   yang  berbeda  pada  klon  yang  sama  menunjukkan  beda  nyata  pada α =  0.05.  Error  bar menunjukkan standar deviasi.
Sifat fisiologi lateks tanaman karet (hevea brasiliensis) akibat pemberian stimulan organik
menghasilkan  produksi  lateks  relatif   sama bahkan  lebih  rendah  dari  kontrol.  Hasil pengamatan  lapangan  menunjukkan  bahwa penggumpalan terjadi pada aliran lateks yang diduga karena rendahnya pH stimulan ekstrak nanas.  Hal  ini  sesuai  dengan  hasil  penelitian oleh  Ketnawa et  al .  (2011)  dan  Hajar et  al.
(2012) yang  melaporkan  bahwa  ekstrak  kulit nanas memiliki nilai pH berkisar 3 – 4.

## Kadar padatan total
Hasil  pengukuran  kadar  padatan  total (TSC)  menunjukkan  jenis  stimulan  secara signifikan  mempengaruhi  nilai  kandungan padatan  di  dalam  lateks  pada  klon metabolisme  tinggi  (PB  260  dan  IRR  118) tetapi  tidak  terjadi  pada  klon  metabolisme rendah  (IRR  39  dan  IRR  42)  (Gambar  2). Stimulan  Ethrel  maupun  SP-1  cenderung memiliki  nilai  TSC  lebih  rendah  (25,8  dan 28,8)  dibandingkan  dengan  kontrol  dan stimulan  ekstrak  buah  (33,7  dan  35,2). M e n a r i k n ya ,   s t i mu l a n   e k s t r a k   b u a h menghasilkan  nilai  TSC  lebih  tinggi dibandingkan dengan kontrol pada klon IRR 118  dan  PB  260.  Sedangkan  jenis  stimulan tidak  berpengaruh  nyata  terhadap  nilai  TSC
pada klon IRR 42 dan IRR 39. Secara alami nilai kadar padatan total akan menurun akibat aplikasi stimulan (Jacob et al ., 1989) dan akan terus berubah selama aliran lateks berlangsung (An et  al .,  2015).  Penelitian  Attanayake et  al . (2018) melaporkan bahwa nilai TSC semakin rendah  jika  konsentrasi  stimulan  semakin ditingkatkan  dan  frekuensi  aplikasi  stimulan semakin sering dilakukan (Gohet et al ., 2019). Hal ini menandakan bahwa faktor utama nilai TSC  ditentukan  oleh  konsentrasi  stimulan. Dalam penelitian ini, jenis stimulan berbahan dasar etefon memiliki kadar etilen lebih tinggi dibandingkan  dengan  kadar  etilen  stimulan organik  sehingga  stimulan  organik  memiliki nilai TSC lebih tinggi. Fluktuasi nilai TSC dari ekstrak  kulit  buah  diduga  karena  rendahnya kandungan etilen dan kandungan cairan yang bersifat masam.

## Kondisi fisiologi tanaman
Kondisi fisiologi tanaman dapat diketahui melalui  diagnosis  lateks  dengan  mengukur kandungan  sukrosa,  fosfat  anorganik,  dan thiol  dalam  lateks.  Hasil  pengamatan menunjukkan  bahwa  jenis  stimulan  tidak menunjukkan  efek  nyata  terhadap  kadar
Gambar 2. Kadar padatan total pada masing-masing klon yang diuji coba dengan beberapa jenis stimulan. Huruf  yang berbeda pada klon yang sama menunjukkan beda nyata pada α = 0.05. Error bar menunjukkan standar deviasi.
sukrosa  (Tabel  1).  Kadar  Pi  hanya  berbeda pada klon klon IRR 118 (Tabel 2), sedangkan kadar thiol hanya berbeda pada klon PB 260 (Tabel 3). Kadar sukrosa klon IRR 118 dan PB 260  berada  pada  kisaran  sangat  rendah  (1,1 mM  –  2,58  mM),  sedangkan  klon  IRR  42 memiliki  kadar  sukrosa  sangat  tinggi  (10,0 mM  –  11,8  mM).  Kadar  sukrosa  dinyatakan sangat rendah jika kadarnya kurang dari 3 mM dan  dan  sangat  tinggi  jika  lebih  dari  6  mM (Balai Penelitian Sungei Putih, 2016). Dalam penelitian  ini,  stimulan  dari  ekstrak  buah menghasilkan respon peningkatan kandungan Pi paling tinggi pada klon IRR 118 (Tabel 2). Secara  umum  klon  IRR  42  memiliki k a n d u n g a n   P i   r e l a t i f   l e b i h   r e n d a h dibandingkan  dengan  klon  IRR  118  dan  PB 260  pada  semua  jenis  stimulan.  Kadar  thiol berada pada rentang sedang (medium) dengan nilai  0,34  mM  –  0,60  mM.  Jenis  stimulan berbahan  etefon  relatif   memberikan  efek fisiologis  lebih  berat  dibandingkan  dengan stimulan  ekstrak  buah  yang  terlihat  dari penurunan kadar thiol di dalam lateks.
Interaksi  antara  jenis  sistem  sadap (frekuensi  stimulan,  frekuensi  sadap,  dosis stimulan dll) dan jenis klon dilaporkan dapat mempengaruhi  kondisi  fisiologi  lateks (Chantuma et al ., 2006; Putranto et al ., 2015; Herlinawati  &  Kuswanhadi,  2018).  Hal tersebut  dapat  diketahui  melalui  analisis kandungan sukrosa, Pi, thiol, dan nilai TSC di dalam  lateks  (Gohet et  al .,  2003).  Hasil penelitian  ini  menunjukkan  bahwa  stimulan berbahan  dasar  etefon  maupun  stimulan organik secara umum tidak memberikan efek nyata  terhadap  nilai  kandungan  parameter- parameter  fisiologi  lateks  selama  5  bulan pengamatan. Hal ini diduga karena pengaruh konsentrasi zat aktif  (etilen) di dalam masing- masing jenis stimulan masih berada direntang batas normal. Lacote et al . (2013) melaporkan bahwa jumlah konsentrasi etilen yang diterima oleh tanaman karet menjadi salah satu faktor penentu kondisi fisiologi di jaringan pembuluh lateks.  Selain  itu  jenis  klon  (genetik)  dapat mempengaruhi  kandungan  sukrosa  dan  Pi lateks.  Karakter  dasar  klon  PB  260

## Tabel 2. Kadar fosfat inorganik (mM) pada masing-masing klon dengan perlakukan jenis stimulan yang berbeda
Angka yang diikuti huruf  yang berbeda pada kolom yang sama menunjukkan berbeda nyata berdasarkan Tukey multiple comparison pada α = 0.05. + menunjukkan standar deviasi.
Sifat fisiologi lateks tanaman karet (hevea brasiliensis) akibat pemberian stimulan organik
Tabel 1. Kadar sukrosa (mM) pada masing-masing klon dengan perlakukan jenis stimulan yang berbeda
Jenis stimulan Klon IRR 118 PB 260 IRR 42 Kontrol 1.11 + 0.56 2.20 + 2.11 11.80 + 5.43 Ethrel 2.05 + 1.52 1.48 + 1.81 10.25 + 4.04 SP 1 1.87 + 1.49 2.17 + 2.80 10.04 + 4.49 Pisang 2.58 + 1.51 3.50 + 3.44 11.41 + 5.76 Nanas 2.14 + 1.34 2.17 + 2.80 10.95 + 4.91 P-value 0.5313 0.7339 0.9763 Jenis stimulan Klon IRR 118 PB 260 IRR 42 Kontrol 18.80 + 5.11 ab 16.38 + 4.14 9.98 + 1.83 Ethrel 16.70 + 2.46 a 13.05 + 0.75 10.77 + 1.54 SP 1 18.99 + 2.50 ab 13.64 + 3.22 9.44 + 0.62 Pisang 25.10 + 4.39 b 14.94 + 2.29 10.06 + 2.95 Nanas 21.83 + 5.26 ab 17.99 + 4.18 9.59 + 0.78 P-value 0.0391 0.1322 0.7835
mengandung  kadar  sukrosa  rendah  dan  Pi tinggi   (Lacote et al ., 2004; Gohet et al ., 2011; Gohet et al ., 2019), klon IRR 42 mengandung kadar sukrosa tinggi dan Pi rendah (Tistama et al .,2019),  sedangkan  IRR  118  kandungan keduanya  tergolong  ke  dalam  sedang (medium) (Herlinawati et al ., 2016).
Menariknya  jenis  stimulan  ekstrak  kulit buah,  walaupun  tidak  signifikan,  terbukti dapat meningkatkan kadar Pi di dalam lateks. Hal  ini  mengindikasikan  bahwa  stimulan berhasil meningkatkan proses metabolisme di dalam  jaringan.  Menurut  Jacob et  al .,  (1989) kadar  Pi  menggambarkan  energi  di  dalam lateks  karena  pengaruh  aktivitas  penyadapan (etilen endogen) dan atau pemberian stimulan (etilen eksogen) (Silpi et al ., 2006). Kadar thiol lateks  cenderung  menurun  pada  pemberian
seluruh  jenis  stimulan  dengan  rentang  nilai 0,34  mM  –  0,60  mM  (Tabel  3). Beberapa laporan menyebutkan aplikasi stimulan dapat menurunkan kadar thiol lateks (d 'Auzac et al ., 1993; Zhang et al ., 2017; Lacote et al ., 2019). Thiol di dalam lateks dapat menjadi indikator kondisi fisiologis jaringan akibat tekanan dari pemberian  stimulan.  Walaupun  aktivitas metabolisme  meningkat,  kadar  thiol  dalam penelitian  ini  masih  tergolong  dalam  kondisi normal.  Penelitian  Putranto et  al .  (2015)  dan Tistama et  al .(2019)  melaporkan  bahwa kandungan  thiol  lateks  pada  tanaman  yang sehat umumnya berada pada rentang 0,25 mM –  0,8  mM.  Tanaman  karet  yang  mengalami gangguan  fisiologis  ditandai  dengan penurunan  kadar  thiol  secara  drastis  atau tingginya kadar thiol di dalam lateks (Jacob et
al .,  1989).  Hasil  ini  menunjukkan  bahwa bahan  ekstrak  kulit  buah  berpotensi  dapat dimanfaatkan  sebagai  alternatif   stimulan untuk meningkatkan produksi lateks.
Ekstrak  buah  pisang  dan  nanas  sebagai stimulan organik memiliki banyak kelebihan, khususnya  bagi  petani  karet  rakyat, diantaranya  yaitu  bahan  baku  cukup melimpah,  mudah  diproduksi,  harga  murah, serta  ramah  bagi  tanaman  dan  lingkungan. Badan  Pusat  Statistik  (2019b) melaporkan bahwa  produksi  buah  pisang  dan  nanas  di Indonesia mencapai 7,26 juta ton dan 1,80 juta ton pada tahun 2018. Selain itu, petani karet rakyat  dapat  memproduksi  stimulan  organik sendiri  dengan  alat  sederhana  sehingga  tidak meningkatkan  beban  biaya  produksi.  Lebih dari  itu,  petani  tidak  perlu  khawatir  karena stimulan  organik  terbukti  tidak  memiliki dampak negatif  terhadap kesehatan tanaman. Upaya  ini  diharapkan  dapat  mendukung p r o g r a m   p e m e r i n t a h   d a l a m   r a n g k a meningkatkan  produktivitas  tanaman sehingga  berdampak  pada  nilai  tambah  dan pendapatkan  petani  hingga  US$  2.000 /KK/tahun di tahun 2025 (Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian, 2007).

## Kesimpulan
Stimulan  berbahan  dasar  etefon  (Ethrel 2,5% dan SP-1) menghasilkan produksi lebih tinggi dibandingkan stimulan organik (ekstrak pisang dan nanas). Walaupun tidak signifikan,
stimulan  organik  dapat  meningkatkan produksi  lateks  tanaman  karet  dan  memiliki kadar padatan total lebih tinggi dibandingkan stimulan  etefon.  Hasil  diagnosa  lateks menunjukkan aplikasi stimulan menghasilkan kadar sukrosa, fosfat anorganik, dan thiol yang berfluktuasi. Kadar thiol lateks masih berada pada  kisaran  normal  dan  belum  melewati ambang  batas  sehingga  tidak  mengakibatkan tekanan fisiologis pada jaringan.

## Daftar Pustaka
An, F., Cai, X., Rookes, J., Xie, G., Zou, Z., Cahill,  D.,  &  Kong,  L.  (2015).  Latex dilution  reaction  during  the  tapping  flow course of  Hevea brasiliensis and the effect of   Ethrel  stimulation. Revista  Brasileira  de B o t a n i c a ,   3 8 ( 2 ) ,   2 1 1 - 2 2 1 . doi:10.1007/s40415-014-0125-7.
Attanayake,  A.  P.,  Karunanayake,  L.,  & Nilmini,  A.  H.  R.  L.  (2018).  Effect  of ethephon  stimulation  on  natural  rubber latex properties; new insight into ethephon stimulation. Journal  of   the  National  Science Foundation  of   Sri  Lanka,  46 (2),  179-185. doi:10.4038/jnsfsr.v46i2.8418.
Badan  Penelitian  dan  Pengembangan Pertanian.  (2007). Prospek  dan  Arah Pengembangan  Agribisnis  Karet  (Ke-2) .
Jakarta,  Indonesia:  Badan  Penelitian  dan Pengembangan  Pertanian. Jenis stimulan Klon IRR 118 PB 260 IRR 42 Kontrol 0.53 + 0.07 0.44 + 0.11 ab 0.60 + 0.09 Ethrel 0.45 + 0.12 0.34 + 0.06 a 0.54 + 0.16 SP 1 0.40 + 0.16 0.39 + 0.09 ab 0.57 + 0.10 Pisang 0.46 + 0.09 0.52 + 0.05 b 0.60 + 0.08 P-value 0.3985 0.01992 0.7611
Tabel 3. Kadar thiol (mM) pada masing-masing klon dengan perlakukan jenis stimulan yang berbeda
Angka yang diikuti huruf  yang berbeda pada kolom yang sama menunjukkan berbeda nyata berdasarkan Tukey multiple comparison pada α = 0.05. + menunjukkan standar deviasi.
Sifat fisiologi lateks tanaman karet (hevea brasiliensis) akibat pemberian stimulan organik
Badan  Pusat  Statistik.  (2019a). Statistik  Karet Indonesia (1st Ed) . Jakarta, Indonesia: Badan Pusat Statistik.
Badan  Pusat  Statistik.  (2019b). Statistik Tanaman  Buah-b uahan  dan  Sayuran Tahunan. . Jakarta, Indonesia: Badan Pusat Statistik.
Balai  Penelitian  Sungei  Putih.  (2016). Lateks Diagnosis  (LD)  di  Kebun  Lingkup  PT. PERKEBUNAN NUSANTARA III (Persero). Diakses dari Balai Penelitian Sungei Putih. Boerhendhy,  I.  (2013).  Penggunaan  stimulan s e j a k   a w a l   p e n y a d a p a n   u n t u k meningkatkan produksi klon IRR 39. Jurnal Penelitian Karet, 31 (2), 117-126.
Botton, A., Tonutti, P., & Ruperti, B. (2019). Biology and biochemistry of  ethylene. In E. M.  Yahia  (Ed.), Postharvest  Physiology  and Biochemistry  of   Fruits  and  Vegetables . Sawston, UK: Woodhead Publishing.
Chantuma,  P.,  Thanisawanyangkura,  S.,
Kasemsap,  P.,  Gohet,  E.,  &  Thaler,  P. (2006).  Distribution  patterns  of   latex sucrose  content  and  concurrent  metabolic activity  at  the  trunk  level  with  different tapping  systems  and  in  latex  production bark of  Hevea brasiliensis. . Kasetsart Journal - Natural Science, 40 (3), 634-642.
d 'Auzac, J. (1989). The Hormonal Stimulation of  Latex Yield: Historical Account. . In J. J. J. d 'Auzac, & H. Chrestin (Ed.), Physiology of  Rubber Tree Latex Boca Raton, USA: CRC Press.
d'Auzac,  J.,  Bouteau,  F.,  Chrestin,  H., Clément, A., Jacob, J., L , LacrotteJ, R., . . . Rona,  P.  (1993).  Stress  ethylene  in  hevea brasiliensis:  Physiological,  cellular  and molecular  aspects.  .  In  J.-C.  Pech  (Ed.), Cellular  and  Molecular  Aspects  ofthe  Plant Honnone Ethylene . Dordrecht, Netherlands: Kluwer Academic Publisher.
Das, K., & Roychoudhury, A. (2014). Reactive oxygen  species  (ROS)  and  response  of antioxidants  as  ROS-scavengers  during environmental  stress  in  plants. Frontiers  in Environmental  Science,  2 (53),  1-13.
doi:10.3389/fenvs.2014.00053.
Dische,  Z.  (1962).  Color  reactions  of carbohydrates.  In  R.  Whistler  &  M. Wolfrom  (Eds.), Methods  in  carbohydrate chemistry .  New  York,  USA:  Academic Press.
Eschbach,  J.,  &  Lacrotte,  R.  (1989).  Factors influencing  response  to  hormonal  yield stimulation: Limits of  this stimulation. In J. D'Auzac, J.-L. Jacob, & H. Chrestin (Eds.), Physiology of  Rubber Tree Latex . Boca Raton,
USA: CRC Press.
Food  and  Agriculture  Organization.  (2008). Area harvested, yield and production quantity of r ubber  tree  by  year .  Diakses  dari: http://www.fao.org/faostat/en/#data/Q C
Galingging, A., Charloq, & Sitepu, F. (2017). Respon  produksi  lateks  dalam  berbagai w a k t u   a p l i k a s i   p a d a   k l o n   k a r e t metabolismetinggi  terhadap  pemberian stimulan etilen ekstrak kulit pisang. Jurnal Agroekoteknologi FP USU, 5 (2), 454-461.
Gohet,  E.,  Chantuma,  P.,  Lacote,  R.,
Obouayeba,  S.,  Dian,  K.,  Clément Demange, A., . . . Eschbach, J. (2003, 15 -18 Desember  ). Latex  clonal  typology  of   Hevea brasiliensis:  Physiological  modelling  of   yield potential  and  clonal  response  to  ethephon stimulation. Tulisan disajikan pada IRRDB Workshop  on  Exploitation  Technology, Kottayam.
Gohet,  E.,  Lacote,  R.,  Rivano,  F.,  Chapuset, T., & Leconte, A. (2011, 7-11 November). Influence  of   Ethephon  Stimulation  on  Latex Physiological Parameters and Consequences on Latex  Diagnosis. Tulisan  disajikan  pada  XI Jornadas  Latinoamericanas  del  caucho natural, Medellin.
Gohet,  E.,  Cauchy,  T.,  Soumahoro,  M., Kotochi,  C.,  Chegbene,  P.,  Njoku,  A.,  & Lesturgez,  G.  (2019,  30  September  -  1 Oktober ). Meta-analysis of  a large industrial latex  diagnosis  database  provides  insight  on Hevea  brasiliensis  clonal  adaptation  and  site- specific  yield  potential  in  Western  Africa. Tulisan  disajikan  pada  International Rubber Conference, Naypyidaw.
Gohet,  E.  (2006).  Sucrose  and  metabolism distribution patterns in the latices of  three Hevea brasiliensis clones : effects of  tapping and stimulation on the tree trunk. . Journal of  Rubber Research, 9 (2), 115–131.
Gohet,  E.,  Kouadio,  D.,  Prévôt,  J.-C., Obouayeba, S., Clément, A., D'Auzac, J., & Keli,  Z.  J.  (1997,  29  -  30  April). Relation between clone type, latex sucrose content and the occurrence  of   tapping  panel  dryness  in  Hevea brasiliensis. Tulisan  disajikan  pada  IRRDB Tapping  Panel  Dr yness  Workshop, Danzhou.
Gohet, E., Lacote, R., Leconte, A., Chapuset, T., Rivano, F., & Chambon, B. (2016, 10-11 Mei). Improving  rubber  smallholdings productivity and resilience through adoption of good  agricultural  practices. Tulisan  disajikan pada Conference: Focus Forum on Natural Rubber  Sustainability.  International Rubber Study Group, Singapore.
Hajar, N., Zainal, S., Nadzirah, K. Z., Roha,
A. M. S., Atikah, O., & Elida, T. Z. M. T.
(2012).  Physicochemical  proper ties analysis of  three indexes pineapple (ananas comosus) peel extract variety n36. APCBEE P r o c e d i a ,   4 ,   1 1 5 – 1 2 1 . doi:10.1016/j.apcbee.2012.11.020.
Herlinawati,  E.,  Aji,  M.,  Cahyo,  A.  N.,  & Ismawanto,  S.  (2016,  21-22  November).
Effect  of   different  seasons  on  the  production  , latex  physiological  parameters  ,  soil  water content  and  the  pattern  of   leaves  shed  of   IRR series clones. Tulisan disajikan pada CRRI & IRRDB  International  Rubber  Conference, Siem Reap.
Herlinawati,  E.,  &  Kuswanhadi,  K.  (2013).
Aktifitas metabolisme beberapa klon karet pada  berbagai  frekuensi  sadap  dan stimulasi. Jurnal Penelitian Karet, 31 (2), 110- 116. doi:10.22302/jpk.v31i2.138.
Herlinawati,  E.,  &  Kuswanhadi,  K.  (2013). Pengaruh  stimulan  etefon  terhadap produksi dan fisiologi lateks berbagai klon IRR. Jurnal Penelitian Karet, 35 (2), 149-158. doi:10.22302/ppk.jpk.v35i2.404.
Huda, N., Suharjo, B., & Suryani, A. (2013).
Adopsi  teknologi  budi  daya  dan  strategi pengembangan perkebunan karet rakyat di kecamatan teweh tengah Kabupaten Barito Utara. . Manajemen IKM: Jurnal Manajemen Pengembangan Industri Kecil Menengah, 8 (2), 135-143. doi:10.29244/mikm.8.2.135-143. Jacob, J., Prevot, J., Roussel, D., Lacrotte, R., Serres,  E.,  D'Auzac,  J.,  .  .  .  Omont,  H. (1989).  Yield-limiting  factors,  latex physiological  parameters,  latex  diagnosis, and  clonal  typology.  In  J.  D'Auzac,  J.-L. Jacob,  &  H.  Chrestin  (Eds.), Physiology  of Rubber Tree Latex Boca Raton: CRC Press.
Ketnawa,  S.,  Chaiwut,  P.,  &  Rawdkuen,  S. (2011).  Extraction  of   bromelain  from pineapple peels. Food Science and Technology I n t e r n a t i o n a l ,   1 7 ( 4 ) ,   3 9 5 – 4 0 2 . doi:10.1177/1082013210387817.
Kudaligama,  K.,  Rodrigo,  V.,  Randunu,  R., Perera, M., & Madushani, P. (2017, 18 - 19 October). A  low  frequency  harvesting  system exclusively for smallholder rubber growers being employed  off-farm. Tulisan  disajikan  pada International Rubber Conference Jakarta.
Lacote,  R.,  Obouayeba,  S.,  Clement- Demange,  A.,  Dian,  K.,  Gnagne,  M.,  & Gohet,  E.  (2004).  Panel  management  in rubber  (hevea  brasiliensis)  tapping  and impact  on  yield,  growth  and  latex diagnosis. Journal  of   Rubber  Research,  7 (3), 119-217.
Lacote,  R.,  Doumbia,  A.,  Obouayeba,  S.,  & Gohet,  E.  (2013,  19-22  November). Sustainable  rubber  production  through  good latex harvesting practices: stimulation based on clonal  latex  functional  typology  and  tapping panel  management. Tulisan  disajikan  pada IRRDB  Workshop  on  Latex  Harvesting Technology, Bình D ươ ng.
Lacote, R., Sainoi, T., Sdoodee, S., Rawiwan, C., Rongthong, P., Kasemsap, P., . . . Gohet, E.  (2019,  30  September  -  1  Oktober).
Performance of  different latex harvesting systems to  increase  the  labor  productivity  of   rubber plantations  in  Thailand. Tulisan  disajikan pada  IRRDB  Inter national  Rubber Conference 2019, Nay Pyi Taw.
Li, G., Wang, Q., Li, Y., Zhou, S., & Yu, H.
(2014). A review of  influencing factors on latex  yield  of   Hevea  brasiliensis. Chinese Journal of  Ecology, 33 (2), 510–517.
Liu, M., Pirrello, J., Chervin, C., Roustan, J. P., &  Bouzayen,  M.  (2015).  Ethylene  control of   fruit  ripening:  Revisiting  the  complex network of  transcriptional regulation. Plant P h y s i o l o g y ,   1 6 9 ( 4 ) ,   2 3 8 0 – 2 3 9 0 . doi:10.1104/pp.15.01361.
McMullen, A. (1960). Thiols of  low molecular weight in Hevea brasiliensis latex. Biochim.
Biophys. Acta, 41 (1), 152-154.
Mukhlis,  Mulya,  E.  B.,  &  Ayu,  S.  F.  (2011). Analisis pengembangan perkebunan karet. Agrica  (Jurnal  Agribisnis  Sumatera  Utara), 4 (1), 18–30.
Nurhayati,  Rahayu,  M.  S.,  Tistama,  R.,  & Asbur, Y. (2017, 18 - 20 Oktober). The Role of  Alternative Stimulants and PEG to Increase Production  and  Bark  Recovery  Clone  PB  260. Tulisan disajikan pada the 7th AIC-ICMR on  Health  and  Life  Sciences  (ICELTICs) Banda Aceh.
Paardekooper, E. (1989). Exploitation of  The
Rubber Tree. In C. Webster & W. Baulkwill (Eds.), Rubber .  London,  UK:  Longman
Group.
Pech,  J.-C.,  Purgatto,  E.,  Bouzayen,  M.,  &
Latché,  A.  (2012).  Ethylene  and  Fruit Ripening. Annual  Plant  Reviews  Online,  44 , 275–304.  doi:10.1002/9781119312994
.apr0483.
Priyadarshan, P. (2017). Biology of  hevea rubber (1st  ed.) .  Gewerbestrasse,  Switzerland.  : Springer International Publishing.
Putranto,  R.  A.,  Herlinawati,  E.,  Rio,  M.,
Leclercq, J., Piyatrakul, P., Gohet, E., . . . Montoro,  P.  (2015).  Involvement  of ethylene  in  the  latex  metabolism  and tapping panel dryness of Hevea brasiliensis . International  Journal  of   Molecular  Sciences,
1 6 ( 8 ) ,   1 7 8 8 5 – 1 7 9 0 8 .   d o i : 1 0 . 3 3 9 0 / ijms160817885.
Saraiva, L. A., Castelan, F. P., Gomes, B. L., Purgatto, E., & Cordenunsi-Lysenko, B. R. (2018). Thap Maeo bananas: Fast ripening and  full  ethylene  perception  at  low  doses. Food  Research  International,  105 ,  384–392. doi:10.1016/j.foodres.2017.11.007.
Silpi, U., Chantuma, P., Kasemsap, P., Thaler, P., Thanisawanyangkura, S., Lacointe, A., . .  .  Gohet,  E.  (2006).  Sucrose  and metabolism  distribution  patterns  in  the latices  of   three  Hevea  brasiliensis  clones  : effects  of   tapping  and  stimulation  on  the tree trunk. Journal of  Rubber Research, 9 (2), 115-131.
Sinamo, H., Charloq, Rosmayati, & Tistama, R. (2015). Response of  latex production at various times application in multiple clones rubber  plantof   giving  several  sources h o r m o n e   e t h y l e n e. J u r n a l   O n l i n e Agroekoteaknologi, 3 (2), 542–551.
Taussky,  H.,  &  Shorr,  E.  (1953).  A microcolorimetric  method  for  the determination  of   inorganic  phosphorus. J Biol Chem, 202 , 675–685.
Tistama,  R.,  Mawaddah,  P.  A.  S.,  Ade- F i p r i a n i ,   L . ,   &   Ju n a i d i .   ( 2 0 1 9 ) . Physiological  status  of   high  and  low metabolism Hevea clones in the difference stage of  tapping panel dryness. Biodiversitas, 20 (1),  267–273.  doi:10.13057/biodiv/ d200143.
Tupý,  J.  (1969).  Stimulatory  effects  of   2,4- dichlorophenoxyacetic  acid  and  of   1- naphthylacetic  acid  on  sucrose  level, invertase activity and sucrose utilization in the latex of  Hevea brasiliensis. Planta, 88 (2),
144–153. doi:10.1007/BF01391120.
Zaidi,  N.  A.,  Tahir,  M.  W.,  Vinayaka,  P.  P., Lucklum,  F.,  Vellekoop,  M.,  &  Lang,  W. (2016).  Detection  of   ethylene  using  gas c h r o m a t o g r a p h i c   s y s t e m . P ro c e d i a e n g i n e e r i n g ,   1 6 8 ,   3 8 0 – 3 8 3 . doi:10.1016/j.proeng.2016.11.140.
Zhang, Y., Leclercq, J., & Montoro, P. (2017). Reactive  oxygen  species  in  hevea brasiliensis  latex  and  relevance  to  tapping panel  dryness. Tree  physiology,  37 (2). doi:10.1093/treephys/tpw106.