## SELEKSI BAKTERI RHIZOSFER TANAMAN RAMBUTAN SEBAGAI AGENS BIOKONTROL PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA CABAI
(Capsicum annum L.)
Selection of Rambutan Rhizosphere Bacteria as A Biocontrol Agent of Antracnose Disease in Chili (Capsicum annum L.)
Ayu Nindita Nuraini 1, Aisyah 2 , Evan Purnama Ramdan 2 * 1 Program  studi  Agroteknologi,  Fakultas  Tekonologi  Industri,  Universitas  Gunadarma (Gunadarma University). ayunindita3@gmail.com
2 Program  studi  Agroteknologi,  Fakultas  Teknologi  Industri,  Universitas  Gunadarma (Gunadarma University). aisyahmp@staff.gunadarma.ac.id 3 Program  studi  Agroteknologi,  Fakultas  Teknologi  Industri,  Universitas  Gunadarma (Gunadarma University). evan_ramdan@staff.gunadarma.ac.id
*) Penulis korespondensi

## ABSTRAK
Cabai  merupakan  sayuran  yang  digemari  masyarakat  Indonesia.Kendala  dalam budidaya cabai yaitu adanya infeksi penyakit antraknosa yang disebabkan Colletotrichum sp. Penelitian ini bertujuan untuk memperoleh isolat bakteri rizosfer yang dapat menekan pertumbuhan. Colletotrichum sp. Colletotrichum diisolasi  dari  buah  cabai  bergejala antraknosa, sedangkan bakteri rhizosfer diisolasi dengan teknik pengenceran dari sampel tanah  di  daerah  perakaran  tanaman  rambutan.  Populasi  bakteri  rhizosfer  dihitung  dan dikarakterisasi  secara  morfologi.Isolat  bakteri  rhizosfer  diuji  antibiosis  dengan Colletotrichum dengan  metoda  uji dual  culture ,  kemudian  dihitung  persentase  daya hambat. benih cabai diamati tinggi tajuk dan panjang akar 14 hari setelah semai. Hasil penelitian  menunjukkan  bahawa  C olletotrichum yang  berhasil  diisolasi  teridentifikasi sebagai C. acutatum, bakteri rhizobia diisolasi sebanyak 5 morfospesies dengan populasi bakteri  4.75  x  104  CFU/mL,  penekanan  pertumbuhan Colletotrichum sp.  oleh  bakteri rhizosfer sebesar 0.31-2.02%. Selain itu bakteri rhizosfer juga memiliki potensi sebagai agens pemacu pertumbuhan tanaman.
Kata kunci : Colletotrichum capsici, plant growth promoting , uji dual culture

## ABSTRACT
Chili  is  a  vegetable  favored  by  the  Indonesian  people.  The  obstacle  in  chili cultivation  is  the  presence  of  anthracnose  infection  caused  by  Colletotrichum  sp.  This study  aims  to  obtain  rhizosphere  bacterial  isolates  that  can  suppress  growth. Colletotrichum sp. Colletotrichum was isolated from chilies with anthracnose symptoms, while rhizosphere bacteria were isolated by the dilution technique from soil samples in the root area of the rambutan plant. Rhizosphere bacterial populations were counted and characterized morphologically. Rhizosphere bacterial isolates were tested for antibiosis with Colletotrichum with a dual  culture test method, then the percentage  of  inhibitory power was calculated. Rhizosphere bacterial isolates were also tested for the potential to promote plant growth by soaking the chili seeds in bacterial suspension overnight. Then
the  chili  seeds  are  sown  in  the  seed  tray.  The  crown  height  and  root  length  were calculated at 14 days after sowing. The results showed that the isolated Colletotrichum was identified as C. acutatum, 5 morphospecies with a bacterial population of 4.75 x 104 CFU /  mL,  suppressed the growth  of  Colletotrichum sp. by rhizosphere  bacteria 0.31- 2.02%. Besides rhizosphere bacteria have potential as agents to promote plant growth.
Keywords: Colletotrichum capsici, dual culture test, plant growth promoting

## PENDAHULUAN
Cabai ( Capsicum annuum L)
merupakan salah satu komoditas hortikultura  yang  memiliki  nilai  ekonomi penting  di  Indonesia.    Volume  peredaran cabai  di  pasaran  sangat  besar  akibat kebutuhan masyarakat terhadap cabai yang tinggi.    Produksi  cabai  besar  Indonesia tahun 2015 menurun dibandingkan produksi  tahun  2014  sebesar  2.74%. Fluktiatif  produksi  cabai  salah  satunya dapat  diakibatkan  oleh  luas  panen  yang menurun,  terutama  pada  triwulan  III  dan triwulan IV (Badan Pusat Stasistik 2015). Kendala  lain  dalam  produksi  cabai  yaitu adanya  infeksi  penyakit  antraknosa. Kehilangan hasil akibat penyakit antraknosa  mencapai  lebih  dari  50%  di seluruh  dunia,  terutama  di  wilayah  tropis dan sub tropis (Than et al., 2008). Penyakit ini  juga  ditemukan  pada  buah  cabai pascapanen  yang  kerusakannnya  dapat mencapai  50%  (Soesanto,  2006)  dimana nilai  estetika  dari  buah  cabai  menjadi rusak. Penyebab penyakit antraknosa pada buah  cabai  diketahui  dari  3  spesies cendawan, yaitu Colletotrichum acutatum,
Colletotrichum gloeosporioides, dan Colletotrichum  capsici (AVRDC  2003).
Colletotrichum merupakan cendawan tular udara  atau  tular  benih  yang  dapat menginfeksi  bagian  daun,  batang,  dan buah.    Adapun  gejala  pada  buah  berupa bercak  sirkular  yang  berlekuk  ke  bagian dalam buah dengan  diameter mencapai 30 mm.  Pada  saat  serangan  berat,  seluruh bagian  buah  cabai  akan  mengering  dan keriput (Thind dan Jhooty, 1985).
Saat  ini  penyakit  antraknosa  masih dikendalikan  secara  konvensional  dengan penggunaan fungisida. Penggunaan fungisida yang intensif dapat me- ningkatkan senyawa toksik yang berbahaya  bagi  manusia  dan  lingkungan. Selain  itu,  penggunaan  yang  berlebihan dapat  menyebabkan  patogen  menjadi resisten (Chowdappa et al., 2013; Rohini et al.,  2016;  Islam  et  al.,  2016).  Salah  satu alternatif  pengendalian  yang  saat  ini banyak  diteliti  adalah Plant  Growth Promoting  rhizobacteria (PGPR).  PGPR merupakan  kelompok  mikroorganisme yang  berasosiasi  dengan  tanaman  melalui kolonisasi pada perakaran tanaman. PGPR
telah  diketahui  berperan  ganda  bagi tanaman  yaitu  sebagai  agens  biokontrol penyakit tanaman dan pemacu pertumbuhan  tanaman  (Dimkpa et  al. 2009; Hariprasad et al., 2014; Islam et al., 2016). Labuschagne et al. (2010) menjelaskan  bahwa  keunggulan  PGPR dibandingkan dengan pengendalian secara konvensional  yaitu  terjadi  secara  alami, tidak  beracun  (toksik),  dan  ramah lingkungan. Adapun aplikasi PGPR untuk pengendalian  penyakit  tanaman  dapat menghasilkan beberapa mekanisme seperti kolonisasi  akar,  antibiosis,  produksi siderofor, senyawa volatile, enzim pendegradasi dinding sel, dan sebagainya.
Aplikasi PGPR telah banyak dilaporkan  pada  tanaman  cabai  baik sebagai  peningkat  daya  kecambah,    vigor benih,  dan  perkembangan  akar  dan  tajuk perkecambahan  (Ramdan  dan  Risnawati 2018; Gowtham et al. 2018 ) sampai pada peningkatan pertumbuhan dan hasil
tanaman cabai (Prihatiningsih et al. 2019;
Ollo et  al. 2019;  Arta et  al .  2019;
Nurunnisa et al. 2020). Selain itu, aplikasi PGPR  juga  telah  dilaporkan  sebagai pengendali penyakit antraknosa pada cabai (Jayapala et al. 2019; Prihatiningsih et al. 2019;  Charumathi  dan  Raj 2020). Eksplorasi  PGPR  masih  sangat  luas, karena  asosiasinya  yang  spesifik  dengan
perakaran  tanaman.  Pada  penelitian  ini akan  dieskplorasi  PGPR  dari  daerah rhizosfer  tanaman  rambutan.  Akan  tetapi, untuk  dapat  ditetapkan  sebagai  agens hayati  diperlukan  serangkaian  pengujian. Adapun  pengujian  ini  dapat  dilakukan dalam kondisi terbatas dan homogen pada skala in  vitro . Setelah itu, pengujian baru dapat  dilanjutkan  pada  tahap in  vivo kemudian in  planta. Oleh  karena  itu, tujuan dari penelitian ini adalah menyeleksi  bakteri  rhizosfer  tanaman rambutan  sebagai  agens  hayati  penyakit antraknosa.

## BAHAN DAN METODE

## Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian dilaksanakan Labora- torium Agroteknologi
Universitas Gunadarma Kampus F7, Ciracas. Jakarta. Berlangsungmulai  bulan  Maret  –  Juni 2020.

## Isolasi dan Pemurnian Bakteri Rizosfer
Sampel  tanah  di  daerah  perakaran tanaman rambutan yang berlokasi di kebun percobaan Universitas Gunadarma, Kampus  F7,  Ciracas,  Jakarta.  Sampel tanah  diambil  pada  kedalaman  0-20  cm sebanyak  1g,  kemudian  dimasukan  ke dalam  9  ml  akuades  steril.  Setelah  itu diencerkan secara berseri sampai
pengenceram 10 -4 . Pada pengenceran 10 -3
dan  10 -4 ditumbuhkan  pada  medium nutrient  agar  20%,  selanjutnya  diamati jumlah koloni.

## Pengamatan dan Perhitungan Populasi Bakteri Rizosfer
Perhitungan populasi bakteri rizosfer dilakukan melalui penhitungan total plate count berdasarkan BSN (2006) menggunakan rumus: 𝑁 = ∑ 𝑐 [(1 × 𝑛1) + (0.1 × 𝑛2]𝑥(𝑑) Keterangan: N = Jumlah koloni produk, dinyatakan dalam CFU per mL ∑c = Jumlah koloni pada semua
cawan yang dihitung
n1 = Jumlah cawan paada
pengenceran pertama yang dihitung
n2 = Jumlah cawan pada pengenceran
kedua yang dihitung
d = Pengenceran pertama yang
dihitung
Isolasi dan Identifikasi Colletotrichum sp. dari Buah Cabai
Isolasi patogen dilakukan dari bagian buah  cabai  terinfeksi  yang  sebelumnya disterilisasi permukaan dengan dicelupkan pada  pada  alkohol  selama  1  menit kemudian  dibilas  menggunakan  akuades
steril  sebanyak  2  kali.  Selanjutnya dikeringanginkan pada tissu steril. Potong buah  terinfeksi  dan  ditanam  pada  cawan yang berisi media tumbuh Potato Dextrose Agar (PDA),  selanjutnya  cawan  tersebut diinkubasi  selama  3–5  hari.    Lakukan pemurnian  isolat  hingga  mendapat  isolat tunggal yang murni.
Amati morfologi baik di permukaan atas maupun di bawah media tumbuh, lalu dideksripsikan meliputi bentuk warna dan bentuk  koloni.  Selanjutnya  potongan miselium diambil menggunakan jarum dan letakan pada object glass untuk diamati di bawah mikroskop. Morfologi dari miselum dan  konidia  kemudian  diidentifikasi dengan mencocokan morfologi yang ada di buku  kunci  identifikasi  Barnett  &  Hunter (1998).

## Uji Antibiosis penyakit antraknosa
Pengujian ini dilakukan untuk menyeleksi  isolat-isolat  yang  berpotenssi sebagai  agens  hayati  terhadap  penyakit antraknosa yang disebakan oleh
Colletotrichum  sp.  Pengujian  dilakukan secara  in  vitro  menggunakan  uji dual culture antara patogen dan isolat rizobakteri  pada  media  Potato  Dextrose Agar  (PDA)  untuk  melihat  daya  hambat rizobakteri  terhadap  patogen.  Masing- masing isolat uji (rizobakter dan patogen)
diinokulasi pada media PDA dengan jarak masing-masing  3  cm  secara  berlawanan dari tepi cawan petri berdiameter 9 cm dan diinkubasi pada suhu ruang selama 6 hari.
Setiap  jenis  bakteri  rizosfer  diuji  dengan pengulangan 3 kali.
Pengamatan  terhadap  presentase daya hambat rizobakteri dilakukan dengan rumus:
𝐷𝐻 = 𝑅1 − 𝑅2 𝑅1
× 100%
Keterangan:
DH = daya hambat bakteri rizosfer R1 = jari jari pertumbuhan patogen kearah tepi cawan petri R2 = jari-jari pertumbuhan patogen kearah bakteri
Uji  Potensi  Bakteri  Rhizosfer  sebagai Pemacu Pertumbuhan Tanaman
Isolat  bakteri  ditumbuhkan  pada media Nutrient  Broth (NB)  10  mL kemudian diinkubasi selama 3 hari dengan mengocok  tabung  selama  3  kali  sehari. Selanjutnya  sebanyak  30  benih  cabai direndam  pada  masing-masing  suspensi bakteri  selama  semalaman.    Benih kemudian  ditanam  pada  baki  semai  dan ditumbuhkan selama 14 hari. Tinggi tajuk
dan  panjang  akar  diukur  pada  akhir pengamatan.

## Analisis Statistik
Analisis  data  menggunakan  program analisis  ragam  SAS  9.1.  dan  dilanjutkan dengan  uji  tukey  pada  taraf  kepercayaan 5%  bila  terdapat  pengaruh  nyata  hasil analisis  ragam,  dengan  jumlah  perlakuan sesuai jumlah isolat hasil seleksi.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Isolasi dan Identifikasi Colletotricum sp.
Antraknosa  merupakan  penyakit yang dapat menyerang pada fase tanaman di lapangan maupun saat fase pascapanen. Gejala umum dari antraknosa yaitu berupa bercak kuning yang membentuk cekungan pada permukaan buah cabai (Gambar 1a). Awal gejala dapat ditandai dengan bercak kecil  yang  mengkilat,  sedikit  terbenam (cekung), berair, warna kuning kehitaman dan  akan  membesar  seiring  waktu. Diamater bercak akan berkembang hingga mencapai 3 - 4 cm. Kemudian warna akan berubah  menjadi  merah  gelap  hingga coklat  muda.  Tanda  penyakit  berupa kumpulan  seta  (aservuli)  berwarna  gelap pada permukaan buah.
Gambar 1. Penampakan a) buah cabai bergejala antraknosa, b) biakan Colletotricum sp., dan 3) konidia Colletotricum sp.
Aservuli pada permukaan buah akan menghasilkan  spora  yang  membentuk lingkaran  konsentrik  (hadden  dan  black, 1989).  Kerusakan  berat  berupa  dapat menyebabkan  buah  menjadi  keriput  dan mengering  serta  membusuk  pada  musim hujan. Hasil isolasi Colletotricum sp. yang dibiakan di media PDA menunjukkan ciri- ciri  miselium  berbentuk  lingkaran  dan berwarna  putih.  Koloni  jenis  ini  menurut Sangdee et all (2011) tampak seperti kapas dengan  warna  putih  keabu-abuan  hingga abu-abu  gelap  pada  pukaan  atas  namun sebaliknya berwarna hitam dan melingkar bila dilihat dari permukaan bawah.   Hasil identifikasi  menunjukkan  bahwa  patogen yang menginfeksi cabai adalah Coletotricum  acutatum yang  dicirikan dengan  kodia  berbentuk  batang  dengan ujung yang membulat (Gambar 1c). Hal ini sesuai laporan Ramdan et al. (2019) bahwa pertumbuhan C.  acutatum lambat  pada
media  PDA  dan  memiliki  konidia berbentuk batang dengan ujung membulakdan.    Kondia  berwarna  hilain dan  bersel  tunggal.  Bentuk  konidia silindris dengan ujung membulat (tumpul), bersekat dengan panjang dan lebar konidia berkisar antara 23.5-35.0 μm dan 2.5-3.75 μm.  Aservulus  berwarna  hitam  dengan rdiameter  100  μm  dengan  seta  berwarna cokelat  berukuran  75-100  x  2-6.2  μm (Sangdee et  al. 2011). C. acutatum telah banyak  dilaporkan  menjadi  penyebab penyakit antraknosa di Asia (Montri et al. 2009;  Christoper dan  Suji, 2014),  sebab selain C. acutatum kelompok Coletotricum di lapang ditemukan dalam 3 spesies yaitu C. acutatum, C. gloeosporiodes, C. capsici (Ramdan et al. 2019).

## Isolasi Bakteri Rhizobia
Bakteri  rhizobia  yang  berhasil disolasi  sebanyak  4.75  ×10 4 CFU/mL.
b c a
Hasil pengamatan secara morfologi terhadap  5  (lima)  isolat  bakteri  rhizosfer rambutan ditemukan beragam ciri meliputi warna  koloni,  bentuk,  elevasi  serta  tepi (Tabel  1).  Adapun  morfologi  yang ditunjukkan yaitu warna kuning dan putih, bentuk irregular dan  c ircular ,  elevasi raised dan flat , serta tepi koloni undulate, entire dan lobate (Gambar 2).
Menurut  Fitri  dan  Yasmin  (2011), pengamatan  morfologi  bakteri  perlu dilakukan  sebab  dapat  mempermudah proses identifikasi. Setelah itu, identifikasi dapat dilanjutkan dengan pengujian biokimia,  teknik  serologi,  maupun  teknik molekuler.  Morfologi  bakteri  pada  media agar  dapat  berbeda-beda  sebab  sifat  dari tiap bakteri yang berbeda. Pada media agar bentuk  koloni  dapat  berupa  titik-titik,
bulat,  berbenang,  tak  teratur  seperti  akar dan  kumparan  .Permukaan  koloni  dapat rata, timbul datar, melengkung, mencembung,  membukit,  dan  serupa kawah.Sedangkan  tepian  koloni  dapat berbentuk  utuh,  berombak,  berbelah, bergerigi,  berbenang,  dan  keriting.  Pada warna,  koloni  bakteri  sebagian  besar berwarna keputihan atau kekuningan, akan tetapi  dapat  juga  berwarna  lain  seperti kemerahan, coklat, jingga, biru, hijau dan ungu.

## Penghambatan  Pertumbuhan  Colletotricum sp. oleh Bakteri Rhizobia
Hasil  pengamatan  uji  dual  kultur menunjukkan  bahwa  terjadi  penekanan perkembangan  miselium  patogen  oleh bakteri rhizobia (Gambar 3).
Tabel 1. Morfologi bakteri rhizobia asal rhiz3osfer rambutan
Kode Isolat Warna Bentuk Elevasi Tepi ATR3 Kuning Irregular Raised Undulate ATR6 Putih Circular Flat Entire ATR7 Putih Irregular Flat Endulate ATR8 Putih Circular Flat Entire ATR9 Putih Circular Flat Lobate
Gambar 2. Enam koloni bakteri rhizobia dari daerah perakaran tanaman rambutan di kebun percobaan Universitas Gunadarma, kampus F7
Tabel 2. Daya hambat bakteri rhizosfer terhadap pertumbuhan Colletotrichum Kode Isolat Daya Hambat (%) Zona Bening ATR3 2.02a* -** ATR6 0.31d - ATR7 1.57b - ATR8 1.26c - ATR9 2.01a - Kontrol 0.00e -
*Angka-angka pada kolom yang sama yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (uji Tukey), -: tidak terbentuk zona bening
Hasil  analisis  statitstik  menunjukkan bahwa  semua  isolat  berpengaruh  nyata terhadap penekanan pertumbuhan Colletotricum  acutatum (Tabel  2).  Daya hambat yang paling besar ditunjukkan oleh isolate  ATR  3  dan  ATR9.  Penghambatan pertumbuhan Colletotrichum oleh  bakteri rhizobia dilaporkan karena adanya
mekanisme antibiosis. Melalui mekanisme ini,  enzim  kitinase  dari  bakteri  rhizobia akan  merusak  dinding  sel Colletotrichum yang tersusun dari kitin (Prihatiningsi et al.
2019).  Salah  satu  bakteri  rhizobia  yang telah diketahui aktivitas kitinasenya adalah bakteri  dari  genus Bacillus (Aziah et  al.
2015; Lestari et al. 2017).
Gambar 3. Pengujian dual culture antara Colletotrichum acutatum dan bakteri rhizosfer:
a) tampak atas, dan b) tampak bawah
Adapun  mekanisme  lain  dari  suatu agens biokontrol yaitu produksi metabolit sekunder  seperti volatile  compounds (hidrogen peroksida), enzim pendegradasi dinding sel (kitinase, glukanase, protease), maupun  antibiotik  di  sekitar  permukaan tanaman  (Haas  dan  Defago  2005). Senyawa  metabolit  tersebut  telah  banyak dilaporkan  signifikan  dalam  Mengen- dalikan patogen tanaman, terutama mekanisme antibiosis (Jayaprakashvel dan Mathivanan,  2011;  Tanya  dan  Filion, 2017).  Enam  kelas  dari  kandungan antibiotik yang berkorelasi dengan biokontrol penyakit tanaman yaitu phenazines,  phloroglucinols,  pyoluteorin,
pyrrolnitrin, cyclic lipopeptides (diffusible compounds) dan hidrogen  sianida (HCN; senyawa volatil ). Meskipun pada pengujian dual culture tidak ditemukannya zona  bening  (Gambar  3)  sebagai  tanda adanya  mekanisme  antibiosis  dalam penekanan  patogen.  Akan  tetapi,  isolat bakteri  rhizobia  masih  dapat  berpotensi sebagai agens biokontrol sebab mekanisme  penekanan  patogen  dapat berupa  mekanisme  kompetisi  ruang  dan nutrisi.  Selain  itu,  perlu  diuji  juga  pada pertanaman  cabai  juga  sehingga  isolat bakteri  rhizobia  juga  bisa  diketahui mekanisme  induksi  ketahanan  terhadap penyakit.
a b
Pengaruh  Bakteri  Rhizobia  terhadap Pertumbuhan Bibit Cabai
Hasil  pengamatan  pada  parameter pertumbuhan  bibit  cabai  menunjukkan bahwa perlakuan bakteri rhizobia memberikan  pengaruh  nyata  terhadap tinggi  tajuk  dan  panjang  akar  (Tabel  3). ATR3  merupakan  isolat  terbaik  karena konsisten  memacu  pertumbuhan  bibit cabai  (tinggi  tajuk  dan  panjang  akar) dibandingkan dengan kontrol dan perlakuan  lain.  Diikuti  oleh  perlakuan ATR  6,  ATR8,  dan  ATR9  juga  mampu memacu pertumbuhan bibit cabai dibandingkan  dengan  kontrol.    Aplikasi bakteri  rhizobia  pada  bibit  dan  tanaman telah  dilaporkan  dapat meningkatan pertumbuhan baik pada fase vegetatifmaupun generatif cabai
(Syamsiah dan Royani, 2014; Ramdan dan Risnawati  2018;  Arta et  al. 2019; Prihatiningsih et  al. 2019;  Ollo et  al. 2019).  Beberapa  mekanisme  bakteri rhizobia  yang  telah  diketahui  mampu
meningkatkan pertumbuhan tanaman yaitu produski  IAA,  pelarutan  fosfat,  fiksasi nitrogen, dan pemanfaataan ACC- daminase.    Melalui  mekanisme  tersebut pertumbuhan tanaman akan terpacu (Ali et al. 2019;  ;  Prihatiningsih et  al. 2019). Produksi  IAA  telah  banyak  ditemukan pada bakter rhizobia pada genus
Agrobacterium,  Pseudomonas,  Bacillus, Enterobacter, Rhizobium dan
Bradyrhizobium  (Ahmed et  al .,  2014; Etesami et  al .,  2015).  Nitrogen  (N) merupakan  unsur  hara  esensial  bagi kelangsungan hidup mikroba dan tumbuhan.  Sementara  itu,  bakteri  yang mengandung  ACC-deaminase  memfa- silitasi  pertumbuhan  dan  perkembangan tanaman  dengan  menurunkan  tingkat etilen  tanaman,  meningkatkan  toleransi tanaman  terhadap  cekaman  biotik  dan abiotik  seperti  bakteri  patogen  tanaman, hidrokarbon,  logam  berat  seperti  Ca2  + dan  Ni2  +,  garam,  kekeringan,  air,  dan cahaya (Glick et al . 2007)

## Tabel 3. Pengaruh bakteri rhizobia terhadap pertumbuhan bibit cabai
Kode Isolat Tinggi Tajuk Panjang Akar ATR3 4.50a 3.10a ATR6 3.80ab 3.17a ATR7 3.23bc 2.37ab ATR8 3.53ab 3.03a ATR9 3.43ab 3.00a Kontrol 2.10c 1.72b
*Angka-angka pada kolom yang sama yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (uji Tukey)

## KESIMPULAN
C olletotrichum yang berhasil diisolasi  dari  penelitian  ini  teridentifikasi sebagai C. acutatum. Hasil pengamatan  5 morfospesies bakteri rhizobia asal rhizosfer rambutan dengan populasi 4.75 x
104 CFU/mL
mampu menekan pertumbuhan Colletotrichum acutatum sebesar  0.31-2.02% . Bakteri  rizosfer  juga mampu meningkatkan pertumbuhan benih cabai  yang  ditandai  dengan  peningkatan tinggi  tajuk  dan  panjang  akar.  Penelitian perlu dilanjutkan untuk menguji keamanan hayati.  Pada  penelitian  ini  daya  hambat yang  ditunjukkan  masih  rendah,  sehinga penelitian  perlu  dilakukan  pada  pengen- dalian penyakit antraknosa langsung pada buah  untuk  mengetahui  mekanisme  lain dari bakteri rhizosfer ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Ahmed E. Holmström SJ. 2014. Siderophores in environmental research:  roles  and  applications. Microb Biotechnol. 7: 196-208.
Ali  S,  Hameed  S,  Shahid  M,  Iqbal  M,
Lazarovits G, Imran A, Functional Characterization of Potential  PGPR  Exhibiting  Broad- spectrum Antifungal activity, Microbiological Research
(2019),
Arta BP, Noor GMS, Makalew AM. 2019.
Respon  cabai  rawit  varietas  hiyung ( Capsicum  frutescens L.)  terhadap konsentrasi  PGPR  ( Plant  growth promoting rhizobateria ) pada ultisol di  Kabupaten  Tanah  Laut. Agrotek
View: Jurnal Tugas Akhir Mahasiswa 2(1): 1-8. Barnett HL., Hunter BB., 1998. Illustrated
Genera  of  Imperfect  Fungi.4th Edition. APS Press, St, Paul. 218 p.
Charumathi  M,  Raj  TS.  Evaluation  of Pseudomonas fluorescens from rhizosphere  soil  against  fruit  rot  of chilli  caused  by Colletotrichum capsici (SYD)  Butler  and  Bisby.
Plant Archives 20(1): 761-766.
Chowdappa  P,  Kumar  SM.  Lakshmi  MJ,
Upreti KK, 2013. Growth stimulation and induction  of  systemic  resistance  in tomato  against  early  and  late  blight by Bacillus
subtilis  OTPB1  or  Trichoderma harzianum OTPB3. Biol. Control 65 (1), 109–117.
Dimkpa  C,  Weinand  T,  Asch  F.  2009.
Plant rhizobacteria interactions alleviate abiotic stress conditions. Plant Cell
Environ . 32:1682–1694. Etesami  H,  Alikhani  HA,  Hosseini  HM. 2015.Indole-3-acetic  acid  (IAA)
production trait, a useful screening to select  endophytic  and  rhizosphere competent  bacteria  for  rice  growth promoting agents. MethodsX . 2, 72-
78.
Fitri  L,  Yasmin  Y.  2011.  Isolasi  dan pengamatan morfologi koloni
bakteri  kitinolitik. Jurnal  Biologi Edukasi 3(2): 20-25.
Glick  BR,  Cheng  Z,  Czarny  J,  Duan  J. 2007. Promotion of plant growth by ACC deaminase-producing soil bacteria. Eur  J  Plant  Pathol. 119:
329-339.
Gowtham  HG,  Murali  M,  Singh  SB,
Lakshmeesha  TR,  Murthy  KN,
Amurthesh KN, Niranjana SR. 2018. Plant growth promoting rhizobacteria Bacillus amyloliquefaciens improves  plant growth  and  induces  resistance  in
chilli  against  antrachnose  disease. Biological  control 126:  209-
217.Haas  D,  Defago  G.  2005.
Biological  control  of  soil-borne pathogens by fluorescent pseudomonas. Nat Rev Microbiol 3:
307-319.
Hariprasad P, Chandrashekar S, Singh SB,
Niranjana SR, 2014. Mechanisms of plant growth  promotion  and  disease suppression by Pseudomonas aeruginosa strain 2apa. J.
Basic Microbiol. 54 (8), 792–801. Islam, S., Akanda, A.M., Prova, A., Islam, M.T., Hossain, M.M., 2016. Isolation and identification of plant growth promoting rhizobacteria from cucumber rhizosphere and  their  effect  on  plant  growth promotion  and  disease  suppression. Front. Microbiol. 6, 1360. Jayapala N, Mallikarjunaiah NH, Puttaswamy  H,  Gavirangappa  H, Ramachandrappa NS. 2019. Rhizobacteria Bacillus spp.  induce
resistance against anthracnose disease  in  chili  ( Capsicum  annuum
L.)  through  activating  host  defense respon. Egyptian Journal of
Biological  Pest  Control 29(45):  1-
9.Jayaprakashvel M, Mathivanan N. 2011.  Management  of  plant  disease by  microbial  metabolites,  di  dalam: Harikesh BS, Chetan K, Reddy MS, Estibaliz  S,  Carlos  GE  (Ed), Bacteria  in  Agrobiologi:  Plant Nutrient  Management, Springer-
Verlag, Berlin, pp 237-265.
Labuschagne  N,  Pretorius  T,  Idris  AH.
2010.  Plant  growth  promoting rhizobacteria as
biocontrol  agents  against  soil-borne plant diseases.  In:  Plant growth  and health
promoting  bacteria.  Springer  Berlin Heidelberg, pp. 211–230.
Nurunnisa,  Kusnadi  D,  Harniati.  2020.
Implementasi teknologi plant growth promoting  rhizobacteria  (PGPR) pada  budidaya  cabai  di  Kecamatan Rancabungur. Jurnal Inovasi Pertanian 1(3): 559-568. Ollo L, Siahaan P, Kolondam B. 2019. Uji penggunaan  PGPR  ( Plant  Growth Promoting  Rhizobacteria )  terhadap pertumbuhan  vegetative  tanaman cabai  merah  ( Capsicum  anuum L.). Jurnal  MIPA  Unsrat  online 8(3):
150-155. Prihatiningsih N, Djatmiko HA, Erminawati, Lestari P. 2019. Bacillus subtilis from potato rhizosphere  as  biocontrol  agent  and chili growth promotor. Jurnal
Perlindungan  Tanaman  Indonesia 23(2): 179-184. Ramdan  EP,  Risnawati.  2018.  Aplikasi bakteri pemacu pertumbuhan
tanaman dari babadotan dan pengaruhya  pada  perkembangan benih cabai. Jurnal  Pertanian Presisi 2(1): 1-10.
Ramdan,  EP,  Arti  IM,  Risnawati.  2019.
Identifikasi dan uji virulensi penyakit antraknosa pada pascapanen  buah  cabai. Jurnal
Pertanian Presisi 3(1): 67-76.
Rohini,  Gowtham,  H.G.,  Hariprasad,  P.,
Singh,  S.B.,  Niranjana,  S.R.,  2016.
Biological
control  of  Phomopsis  leaf  blight  of brinjal (Solanum melongena L.) with combining phylloplane and rhizosphere colonizing  beneficial  bacteria. Biol. Control 101:
123–129.
Sangdee,  A,  Sachan,  S  &  Khankhum,  S 2011,  ‘Morphological,  pathological and molecular variability of
Colletotrichum capsici causing anthracnose  of  chilli  in  the  North-
East  of  Thailand’, Afr.  J.  Microb. Res. 5 (25): 43-72.
Soesanto  L.2006.  Penyakit  Pascapanen  : Sebuah  Pengantar.  Jakarta  (ID):
Kanisius.
Syamsiah  M,  Royani.  2014.  Respon pertumbuhan  dan  produksi  tanaman cabai merah ( Capsicum annuum L.) terhadap  pemberian  PGPR  ( Plant growth promoting rhizobakteri) dari akar  bamboo  dan  urine  kelinci.
Jurnal Agroscience 4(2): 109-114.
Tanya  A,  Filion  M.  2017.  Biocontrol through antibiosis: exploring the role played by subinhibitory concentrations  of  antibiotics  in  soil and  their  impact  on  plant  pathogen.
Can J Plant Pathol 39: 675-693. Than  PP,  Prihastuti  H,  Phoulivong  S,
Taylor  PW,  Hyde  KD.  2008.  Chilli anthracnose  disease  caused  by Colletotrichum  species. J.  Zhejiang Univ. Sci. 9 (10), 764.
Thind  TS,  Jhooty  JS.  1985.  Relative prevalence  of  fungal  diseases  of chilli fruits in Punjab.  J.  Mycol.  Plant  Pathol.  15 (3), 305–307.