PENAMBAHAN ZEOLIT, KARBON AKTIF, MINYAK CENGKEH, DAN SALINITAS YANG BERBEDA TERHADAP RESPON GLUKOSA, TINGKAT KERJA OSMOTIK DAN HISTOLOGI BENIH UDANG GALAH PADA SIMULASI TRANSPORTASI TERTUTUP DENGAN KEPADATAN TINGGI
THE ADDITION OF ZEOLITE, ACTIVATED CARBON, CLOVE OIL, AND DIFFERENT SALINITY FOR GLUCOSE RESPONSE AND OSMOTIC PRESSURE ON JUVENILE GIANT PRAWN IN CLOSED TRANSPORT SIMULATION SYSTEM WITH HIGH DENSITY
Humairani 1* , Eddy Supriyono 1 , dan Kukuh Nirmala 1
1 Departemen Budidaya Perairan, FPIK-IPB, Bogor
* E-mail: humairaniyahdien@yahoo.co.id

## ABSTRACT
Long distance transportation of prawn juvenile usually use a closed system. Indonesian farmers often face    problem  in  this  juvenile  transportation  such  as  a  low  survival  rate  due  to  shrimp  stress  and changes in  water quality during transportation. This study  was aimed to determine the effect of salt, cloves  oil,  zeolite,  and  activated  carbon  for  maintaining  water  quality  in  24  hours  juvenile  giant prawn simulation transportation at high density. The study was conducted at laboratory scale with a complete  randomized  design  with  4  treatments  and  3  replicates.  For  each  treatments,  it  was  added 4.67 µl/L clove oil, 20 g of zeolite, 10 g of activated carbon within 4 (four) different salt concentration i.e., 0 g/L (A), 4.7 g/L (B), 9.4 g/L(C), 14.1 g/L(D) and K (without salt, clove oil, zeolites and activated carbon). The results showed that the addition of 9.4 g/L of salt, 4.67 µl/L clove oil, 20 g of zeolite , and 10 g of activated carbon produced the best results with the highest survival rate by 88±2% at the end of simulation transportation and 82±2.83% after rearing, water quality and physiological respons of shrimp remains in good condition at the simulation transportation and at rearing.
Keywords: juvenile giant prawn, salt, high density, physiological responses

## ABSTRAK
Pengangkutan  benih  hidup  jarak  jauh  umumnya  menggunakan  sistem  tertutup.  Akan  tetapi  masalah yang  sering  dihadapi  oleh  petani  Indonesia  dalam  pengiriman  benih  udang  galah  adalah  tingkat  ke- langsungan  hidup  yang  rendah  akibat  udang  stres  dan  perubahan  kualitas  air  selama  transportasi. Penelitian  ini  bertujuan  untuk  menentukan  pengaruh  pemberian  garam,  minyak  cengkeh,  zeolit  dan karbon aktif dalam mempertahankan kualitas air pada simulasi transportasi benih udang galah dengan kepadatan  tinggi  selama  24  jam.  Penelitian  dilakukan  pada  skala  laboratorium  dengan  Rancangan Acak  Lengkap  dengan  4  perlakuan  dan  3  ulangan  yaitu  setiap  perlakuan  ditambahkan  4,67  µl/L  mi- nyak  cengkeh,  20  g  zeolit,  10  g  karbon  aktif  dan  garam  masing-masing  perlakuan  A  (0  g/L),  B  (4,7 g/L), C (9,4 g/L), D (14,1 g/L)  dan K (kontrol). Hasil penelitian  menunjukkan bahwa pemberian  9,4 g/L garam, 4,67 µl/L minyak cengkeh, 20 g zeolit , dan 10 g karbon aktif memberikan hasil terbaik ya- itu tingkat kelangsungan hidup tertinggi sebesar 88±2% pada saat simulasi tranportasi dan  82±2,83% pada akhir pemeliharaan, kualitas air dan renspon fisiologi udang tetap dalam kondisi baik saat simu- lasi transportasi dan pemeliharaan.
Kata kunci: benih udang galah, garam, kepadatan tinggi, respon fisiologi

## I. PENDAHULUAN
Udang  galah  ( Macrobrachium  rosen- bergii ) merupakan salah satu komoditas peri-
kanan yang bernilai ekonomis tinggi baik un- tuk  konsumsi  dalam  negeri  maupun  ekspor. Permintaan  pasarnya  pun  semakin  mening- kat,  sedangkan  penangkapan  udang  galah  di
laut  semakin  sulit.  Sehingga  perlu  dikem- bangkan  usaha  pembudidayaannya.  Untuk memenuhi kebutuhan tersebut diperlukan ke- tersediaan  benih  dalam  jumlah  yang  cukup dan  kualitas  yang  baik.  Salah  satu  upaya yang dapat dilakukan adalah dengan melaku- kan  kegiatan  pembenihan.  Udang  galah  me- rupakan spesies yang siklus hidupnya melalui lingkungan perairan payau dan bersifat eury- haline (Himawan dan Khasani, 2010). Udang galah  hidup  di  air  payau  saat  stadia  telur hingga  larva  dan  saat  stadia  juvenil  sampai dewasa  hidup  di  air  tawar.  Saat  ini  kegiatan pembenihan udang galah di Indonesia terkon- sentrasi  di  Pulau  Jawa,  sedangkan    kegiatan pembesarannya  tersebar  di  Pulau  Jawa,  Su- matera, dan Kalimantan. Karena adanya jarak antara  tempat  pembenihan  dan  pembesaran, maka transportasi benih udang galah dibutuh- kan untuk menunjang kegiatan produksi.
Transportasi  ikan  hidup  dapat  diarti- kan  sebagai  suatu  tindakan  memindahkan ikan  dalam  keadaan  hidup  dari  suatu  tempat ke  tempat  lain  yang  di  dalamnya  diberi  tin- dakan-tindakan  untuk  menjaga  agar  derajat kelangsungan  hidup  ikan  tetap tinggi  hingga ke tempat tujuan. Sistem transportasi ikan di- bagi  menjadi  dua,  yaitu  transportasi  ikan sistem basah dan kering (Wibowo, 1993). Pa- da  transporasi  sistem  basah,  media  dituntut sama  dengan  tempat  hidup  ikan  sebelumnya seperti air dan oksigen. Sistem  basah terbagi atas  dua  metode  yakni  metode  terbuka  dan metode  tertutup  (Wibowo,  1993).  Pada umumnya  transportasi  benih  jarak  jauh menggunakan  metode  sistem  basah  tertutup (Anandasari,  2015).  Transportasi  sistem  ba- sah tertutup yaitu air pada wadah pengangkut tidak  berhubungan  langsung  dengan  udara. Sistem transportasi ini lebih menguntungkan, efesiensi  penggunaan  tempat,  ikan  yang  di- angkut  lebih  banyak, dan dapat ditransporta- sikan  hingga  jarak  yang  jauh  (Junianto, 2003).
Permasalahan  yang  sering  dihadapi oleh  pembudidaya  Indonesia  dalam  pengi- riman  benih  udang  galah  adalah  kepadatan yang  rendah,  tingkat  kelangsungan  hidup
yang  rendah  akibat  udang  stres  dan  peru- bahan  kualitas  air  selama  transportasi.  Ber- dasarkan permasalahan tersebut, maka diper- lukan  penelitian  untuk  meningkatkan  efisi- ensi  transportasi  khususnya  untuk  benih udang galah agar kematian bisa diminimalisir sehingga  transportasi  menjadi  lebih  efisien. Oleh  karena  itu  diperlukan  teknologi  yang sesuai,  tepat,  mudah,  dan  murah  yang  dapat diterapkan  untuk  mengatasi  permasalahan transportasi  benih  udang  galah.  Penelitian tentang transportasi  ikan  baik  ikan konsumsi atau  ikan  hias  sudah  sering  dilakukan,  akan tetapi  penelitian  tentang  transportasi  benih udang galah belum banyak dilakukan (Anan- dasari, 2015). Transportasi benih udang galah pada  petani  masih  menggunakan  kepadatan rendah yaitu 50 ekor/L dan lama transportasi maksimal 8 jam dengan tingkat kelangsungan hidup  sebesar  80%  (Anandasari,  2015). Anandasari (2015) melakukan simulasi trans- portasi benih udang galah dengan bobot 0,40 ±0,02  g/ekor  dengan  lama  transportasi  24 jam dengan dosis  zeolit 20 g/L, karbon  aktif 10  g/L    dan    minyak  cengkeh  4,67  µl/L  de- ngan kepadatan benih udang galah 100 ekor/ L  menghasilkan  tingkat  kelangsungan  hidup 73%. Oleh karena  itu perlu diteliti  lebih  lan- jut  untuk  transportasi  benih  udang  galah dengan  memberikan  material  tambahan  se- perti garam (0 g/L , 4,7 g/L, 9,4 g/L, 14,1 g/L) , minyak cengkeh (4,67 µl/L), zeolit  (20 g/L), dan karbon aktif (10 g/L). Diharapkan bahan- bahan tersebut dapat mempertahankan kuali- tas  air  selama  proses  pengangkutan,  sehing- ga  dapat  meningkatkan  efisiensi  transportasi dan meminimalisasi tingkat kematian udang.
Garam  (NaCl)  ditambahkan  untuk menurunkan  ketidakseimbangan  tekanan  os- motik  yang  disebabkan  perbedaan  kadar  mi- neral  antara  air  dan  cairan  tubuh  (Swann, 1993). Minyak cengkeh telah terdaftar dalam kategori  US Food  and  Drug  Administration (USFDA)  sebagai  bahan anestesi  yang aman dan ideal. Oleh karena itu, bahan ini menjadi pilihan untuk anestesi masa depan dalam ke- giatan  akuakultur  (Charoendat et  al., 2009). Zeolit dan karbon aktif dapat menyerap amo-
niak  dan  melakukan  penukaran  ion  (Zhang and Perschbarcher, 2003).
Penelitian ini bertujuan untuk menen- tukan efektivitas penambahan garam, minyak cengkeh,  zeolit,  dan  karbon  aktif  dalam mempertahankan  kualitas  air  pada  pengang- kutan  tertutup  sehingga  dapat  meminimalisir tingkat kematian benih udang galah yang di- angkut  selama  24  jam  dan  kondisi  fisiologi udang pascatransportasi tetap baik.

## II. METODE PENELITIAN

## 2.1. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bu- lan  Januari-Mei  2015.  Simulasi  dan  pemeli- haraan  benih  pascatransportasi  dilakukan  di Laboratorium  Lingkungan  Akuakultur,  De- partemen Budidaya Perairan (BDP), Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan (FPIK), Institut Pertanian  Bogor  (IPB).  Uji  kualitas  air  dila- kukan  di  Laboratorium  Lingkungan  FPIK IPB. Histologi insang dilakukan di Laborato- rium  Kesehatan  Ikan  FPIK  IPB.  Uji  tingkat kerja  osmotik  diukur  di  Laboratorium  Em- briologi  Fakultas  Kedokteran  Hewan  (FKH) IPB.  Uji  konsentrasi  glukosa hemolymph di Laboratorium Fisiologi FKH IPB.

## 2.2. Penelitian Simulasi Transportasi
Udang  uji  yang  digunakan  pada  per- cobaan  ini adalah  benih udang galah dengan bobot 0,45±0,18 g  yang diperoleh dari Balai Penenlitian Pemuliaan Ikan, Sukamandi. Be- nih  udang  galah  dipelihara  terlebih  dahulu agar  dapat  mengurangi  stres  pascatranspor- tasi dari balai. Sebelum benih diuji dilakukan pemuasaan selama 24 jam agar dapat mengu- rangi  konsentrasi  amonia  pada  saat  percoba- an,  kemudian  disiapkan  30  lembar  kantong plastik  dan  karet  pengikat,  salah  satu  ujung plastik  dipasang  keran  untuk  mengambil sampel air dan ujung  yang  lain dipasang ke- masan  zeolit  dan  karbon  aktif.  Selanjutnya kantong  plastik  diisi  dengan  air  masing- masing 1,5 L, kemudian setiap perlakuan di- tambahkan  minyak  cengkeh  dan  garam  se- suai dosis, benih udang galah dimasukkan ke
dalam kantong plastik dengan kepadatan 100 ekor  per  kantong.  Setiap  kantong  diisi  oksi- gen  dengan  perbandingan  1:3  dan  diikat  de- ngan karet gelang dan dimasukkan ke dalam kotak styrofoam . Selanjutnya  dimasukkan  es batu ke dalam kotak styrofoam agar suhu sta- bil sekitar 20 ° C, kemudian ditutup.
Pengamatan keadaan udang dilakukan setiap 4 jam dan pengambilan sampel air se- banyak  80  ml  per  kantong.  Pengamatan  dan pengambilan  sampel  dihentikan  setelah  24 jam. Sampel air digunakan untuk uji kualitas air  yaitu  DO,  suhu,  CO 2, dan  NH 3 .  Pengam- bilan sampel dilakukan dengan cara membu- ka keran yang sudah dipasang di ujung plas- tik sehingga air yang ada di dalam plastik da- pat keluar tanpa mengalami difusi udara dari luar packing .  Proses  transportasi  dilakukan secara  simulasi di  laboratorium,  yaitu disim- pan di kotak styrofoam yang diguncangkan di atas  permukaan  air  dengan  menggunakan blower . Pada saat simulasi transportasi benih udang  galah  selama  24  jam  diamati  tingkat kelangsungan  hidup,  kualitas  air,  fisiologi udang, dan penentuan dosis optimum.

## 2.3. Penelitian Pascatransportasi
Pemeliharaan benih udang galah dila- kukan  selama  30  hari  setelah packing di- bongkar. Benih udang galah dipelihara seba- nyak  50  ekor  di  dalam  akuarium  dengan  di- mensi 75x50x40  cm.  Akuarium diisi air de- ngan  ketinggian  40  cm  dan  diaerasi.  Benih udang galah dipelihara dengan pemberian pa- kan  berupa  pelet at  satiation .  Selama  peme- liharaan  pascatransporasi  dilakukan  penga- matan  kualitas  air,  tingkat  kelangsungan  hi- dup, dan fisiologi udang.

## 2.4. Parameter yang Diamati
Pengukuran  tingkat  kerja  osmotik menggunakan metode osmometer. Pengukur- an  tingkat  kerja  osmotik  dilakukan  pada  be- nih udang  normal (sebelum transportasi) dan pascatransportasi  (0  dan  3  jam).  Konsentrasi glukosa  diukur  dengan  metode  Wedemeyer and  Yasutake (1977).  Pengamatan parameter Glukosa dilakukan pada  benih udang  normal
(sebelum  transportasi),  dan  pascatransportasi (0  dan  24  jam),  kemudian  dilakukan  setiap 10 hari sampai akhir pemeliharaan. Histologi insang  menggunakan  Pewarnaan  Haematok- silin & Eosin. Histologi insang dilakukan pa- da udang normal (sebelum transportasi), pas- catransportasi  (bongkar packing )  dan  akhir pemeliharaan. Pengukuran DO menggunakan DO  meter,  pengukuran  suhu  menggunakan termometer  air  raksa  (Hg),  pengukuran  CO 2 menggunakan metode titrasi , dan pengukuran NH 3 menggunakan metode Indophenol. Nilai TAN  dikalikan  dengan  persentase  amoniak yang  tidak  terionisasi  berdasarkan  nilai  pH dan  suhu . Tingkat  kelangsungan  hidup  dan laju  pertumbuhan  harian  diukur  dengan menggunakan  metode  Zonneveld et  al. (1991).

## 2.5. Rancangan Percobaan dan Analisa Data
Rancangan  percobaan  yang  diguna- kan  pada  penelitian  ini  adalah  Rancangan Acak  Lengkap  (RAL)  dengan  4  perlakuan dan 3 ulangan. Perlakuan yang diujikan yaitu penambahan  zeolit,  karbon  aktif,  minyak cengkeh  dengan  kadar  eugenol  40,09%  se- banyak  4,67    µl/L  (Anandasari,  2015)  dan garam.  Dosis  garam  yang  digunakan  diper- oleh  dari  LC 50 24  jam  (18,8  g/L)  dikalikan 0%, 25%, 50% dan 75%. Perlakuan yang di- gunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  sebagai berikut: A: 20 g zeolit + 10 g karbon aktif + 4,67  µl/L  minyak cengkeh + 0  g/L  garam, B: 20 g zeolit + 10 g karbon aktif + 4,67  µl/ L minyak cengkeh + 4,7 g/L  garam, C: 20 g zeolit  +  10  g  karbon  aktif  +  4,67    µl/L  mi- nyak cengkeh + 9,4 g/L  garam, D: 20 g zeo- lit  +  10  g  karbon  aktif  +  4,67    µl/L  minyak cengkeh + 14,1 g/L  garam,  K:  kontrol  (tan- pa  zeolit,  karbon  aktif,  minyak  cengkeh  dan garam)
Data  yang  diperoleh  ditabulasi  dan dianalisis  secara  statistik  menggunakan  ana- lisis ragam (ANOVA) dengan uji  F pada se- lang  kepercayaan  95%  menggunakan  MS. Excel  dan  SPSS  17  untuk  menentukan  apa- kah  perlakuan  berpengaruh  terhadap  para-
meter  yang  diamati.  Apabila  berpengaruh nyata,  dilakukan  uji  lanjut  menggunakan  uji Duncan untuk  melihat  perbedaan  antar  per- lakuan yang diuji. Uji statistik dilakukan ter- hadap  beberapa parameter,  yaitu:  tingkat ke- langsungan hidup, konsentrasi glukosa hemo- lymph dan  tingkat  kerja  osmotik.  Selain  dia- nalisa  menggunakan  statistik,  beberapa  data lainnya  dianalisa  secara  deskriptif  menggu- nakan gambar dan grafik yaitu histologi, DO, suhu, CO 2 , dan NH 3 .

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1. Kondisi Kualitas Air Media
Konsentrasi  oksigen  terlarut  pada Gambar 1a menunjukkan DO meningkat mu- lai  dari  awal  perlakukan  sampai  jam  ke-8. Hal  ini  dikarenakan  kerasnya  goncangan yang  mengakibatkan  terjadinya  difusi  oksi- gen antara air dan udara di dalam plastik. Ke- mudian konsentrasi DO mulai menurun pada jam  ke-12  sampai  jam  ke-24.  Konsentrasi DO pada  jam  ke-24 tidak  memiliki perbeda- an  yang  signifikan  antara  perlakuan  yaitu berkisar  antara  5,4-5,8  mg/L.  Menurut  Boyd (2012),  DO  yang  baik  untuk  kehidupan udang  adalah  lebih  dari  5  mg/L.  DO  pada saat  transportasi  masih  dapat  memenuhi  ke- butuhan  oksigen  udang  galah.  Konsentrasi CO 2 dalam media air pengangkutan terus me- ngalami  peningkatan  dari  jam  ke-0  hingga jam  ke-24  (Gambar  1b).  Hal  ini  disebabkan pada  saat  udang  berada  pada  media  penge- pakan, udang  masih  melakukan aktivitas un- tuk bergerak sehingga oksigen yang ada pada media  pengepakan  digunakan  oleh  udang bernafas dan udang mengeluarkan CO 2 (Sup- riyono et al., 2010).
Suhu  merupakan  suatu  variabel  kua- litas  air  yang  sangat  mempengaruhi  variabel kualitas air yang lainnya. Suhu yang mening- kat akan meningkatkan proses biokimia yang terjadi  pada  tubuh  benih  udang  galah.  Seba- liknya,  saat  terjadi    penurunan    suhu,  maka proses metabolisme dalam tubuh benih udang galah  mengalami  penurunan.  Suhu  dalam media pengepakan selama  24  jam  berkisar
19-25 ° C  (Gambar 1c).  Fluktuasi tersebut ti- dak membahayakan bagi kelangsungan hidup benih udang galah. Menurut Stickney (1979) bahwa  fluktuasi  suhu  yang  membahayakan bagi  udang  adalah  5 o C  dalam  satu  jam,  se- dangkan  selama  proses  pengangkutan  fluk- tuasi suhu hanya sebesar 1-2 o C selama 4 jam. Konsentasi NH 3 pada perlakuan kontrol mengalami  peningkatan  konsentrasi  seiring dengan  bertambahnya  waktu  (Gambar  1d). Nilai  NH 3 ini  didapatkan  dari  nilai  TAN dengan  memperhitungkan  suhu dan pH pada masing-masing  perlakuan.  Peningkatan  kon- sentrasi  NH 3 di  dalam  media  pengepakan
disebabkan  peningkatan  laju  metabolisme udang  pada  media  pengepakan.  Hal  ini  di- karenakan  laju  metabolisme  di  dalam  wadah pengepakan  meningkat  tiga  kali  lipat  dari metabolisme  rutin,  yang  meningkatkan  laju pada  jam  ke-24  dapat  dilihat  bahwa  kon- sentrasi NH 3 terendah pada perlakuan 9,4 g/L sebesar  0,061±0,005  mg/L,  diikuti  oleh  per- lakuan  4,7  g/L  sebesar  0,062±0,003  mg/L, perlakuan 14,1 g/L sebesar  0,064±0,003  mg/ L, perlakuan 0  g/L sebesar 0,446±0,044 mg/ L dan perlakuan kontrol memiliki konsentrasi NH 3 tertinggi sebesar 1,815±0,173 mg/L.
a.
Gambar 1.  Kualitas air media transportasi. metabolisme udang.
Perbedaan  konsentrasi  NH 3 pada  setiap  per- lakuan  disebabkan  oleh  pengaruh  garam, zeolit  dan  karbon  aktif  yang  diberikan,  per- lakuan  yang  tidak  diberikan  garam  memiliki nilai  NH 3 yang  cukup  tinggi  dan  perlakuan kontrol  yang  tidak  diberikan  garam,  zeolit dan  karbon  aktif  memiliki  nilai  NH 3 yang sangat  tinggi.  Salah  satu  cara  untuk  mengu- rangi  konsentrasi  amoniak  adalah  menggu- nakan zeolit dan karbon aktif, di mana zeolit dan  karbon  aktif  ini  mampu  mengadsorbsi sejumlah amoniak dalam waktu tertentu. Da- lam  waktu  satu  jam  zeolit  berukuran  -40/60 mesh dengan berat 10 g mampu menurunkan kandungan  amonia  sampai  1,2  mg/L  (Supri- yono et al., 2007).

## 3.2. Tingkat Kerja Osmotik
Hasil  pengukuran  TKOs sebelum transportasi menunjukkan udang normal  me- miliki  nilai  TKOs  sebesar  0,700±-0,007 osmol/kg.  Nilai  TKOs  pada  jam  ke-0  ter- tinggi  ditemukan  pada  perlakuan  kontrol  se- besar  0,754±0,004 osmol/kg, sedangkan per- lakuan 14,1 g/L memiliki nilai TKOs teren- dah  sebesar  0,304±0,023  osmol/kg,  diikuti perlakuan 9,4 g/L dengan nilai TKOs sebesar 0,511±0,023  osmol/kg,  perlakuan  4,7  g/L dengan  nilai  TKOs  sebesar  0,609±0,004 osmol/kg  dan  perlakuan  0  g/L  dengan  nilai TKOs  sebesar  0,664±0,004  osmol/kg  (Gam- bar 2). Perlakuan 9,4 g/L dan 14,1 g/L meru- pakan  kondisi  mendekati  isoosmotik  yaitu
mendekati 0 (Sobirin et al., 2015). Hasil ana- lisis ragam statistik menunjukkan TKOs per- lakuan  kontrol  tidak  berbeda  nyata  pada perlakuan 0 g/L (p > 0,05), tetapi berbeda nya- ta  dengan  perlakuan  4,7  g/L,    9,4  g/L,  dan 14,1  g/L.  Tingkat  kerja  osmotik  yang  sema- kin rendah menyebabkan semakin sedikitnya energi  yang  digunakan  untuk  osmoregulasi sehingga  porsi  energi  untuk  meningkatkan kelangsungan  hidup  dan  pertumbuhan  sema- kin besar (Setiyoningsih, 2014).
Hasil  penelitian  pada  jam  ke-0  me- nunjukkan  bahwa  benih  udang  galah  perla- kuan 4,7 g/L, 0  g/L dan kontrol  bersifat hy- perosmotic .  Hasil  TKOs  pada  jam  ke-3  me- nunjukkan  semua  perlakuan  bersifat hype- rosmotic, yaitu  tekanan  osmotik  cairan  tu- buhnya lebih tinggi daripada tekanan osmotik medianya.  Oleh  karena  itu,  benih  udang  ha- rus  mengembangkan  mekanisme  fisiologi- nya  untuk  mencegah  kelebihan  aliran  air  ke dalam  tubuh  dan  juga  mengembangkan  me- kanisme    untuk    mencegah    kehilangan  zat terlarut  sebagai  kelebihan  air  yang  diekskre- sikan  melalui  proses  osmoregulasi.  Hal  ini juga    dijelaskan    oleh    Evans    (2008)    yaitu udang  air  tawar  yang  memiliki  tekanan  os- motik cairan tubuh yang lebih tinggi daripada tekanan  osmotik medianya akan meningkat- kan  aliran  air  ke  dalam  tubuh  dan  menye- babkan  kehilangan  NaCl  secara  difusi  mela- lui epitel insang permeabel. Untuk menjaga
Gambar 2. Tingkat kerja osmotik benih udang galah dari semua perlakuan selama penelitian. Huruf kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05).
maka  udang  mengekskresikan  urine hypoto- nic dalam volume yang relatif besar dan me- nyerap  NaCl  secara  aktif  melintasi  epitel insang.

## 3.3. Konsentrasi Glukosa
Hasil  pengamatan  konsentrasi  glu- kosa hemolymph sebelum  transportasi  me- nunjukkan  udang  normal  memiliki  nilai sebesar  3,34±1,58  mg/dL.  Pengamatan  pada hari  ke-0  pascatransportasi  menunjukkan  se- mua perlakuan  mengalami peningkatan  yang beda  nyata  dibandingkan  dengan  nilai  kon- sentrasi  glukosa  normal  (p<0,05).  Nilai  ter- tinggi  ditemukan  pada  perlakuan  kontrol  se- besar 33,12±1,35 mg/dL, sedangkan nilai ter- endah ditemukan pada perlakuan 4,7 g/L  se- besar  18,79±3,87  mg/dL  (Gambar  3).  Hasil analisis ragam statistik menunjukkan konsen- trasi  perlakuan  kontrol  berbeda  nyata  pada perlakuan  4,7  g/L  (p<0,05).  Perlakuan  kon- trol  memiliki  TKH  terendah  dibandingkan dengan  perlakuan  lainnya.  Hal  ini  diakibat- kan  tingginya  konsentrasi  glukosa.  Pening- katan  konsentrasi  glukosa hemolymph ter- sebut  disebabkan  oleh  stres  akibat  perlakuan yang  diberikan  (Adiyana et  al., 2014).    Se-
makin tinggi  konsentrasi  glukosa darah me- ngindikasikan  meningkatnya  level  stres.  Hi- perglisemia  merupakan  indikator  terjadinya stres  awal,  karena  tingkat  glukosa  darah  sa- ngat  sensitif  terhadap  hormon  stres  (Hastuti et al ., 2003).
Konsentrasi  glukosa  pascastres  mem- perlihatkan kecenderungan menurun dari hari ke-1  sampai  ke-30.  Penurunan  glukosa  pas- castres ini terjadi karena kinerja insulin yang berfungsi  mengangkut  glukosa  untuk  masuk ke  dalam  sel.  Pengamatan  pada  hari  ke-10 sampai ke-30 menunjukkan semua perlakuan mengalami  penurunan  yang  tidak  berbeda nyata  dibandingkan  dengan  nilai  konsentrasi glukosa  normal  (p>0,05).  Konsentrasi  glu- kosa  dipertahankan  homeostasinya  oleh  or- gan hati melalui metabolisme glukosa. Bebe- rapa  mekanisme  yang  berperan  dalam  mem- pertahankan  homeostasi  glukosa  adalah  gli- kogenesis,  glukoneogenesis,  lipolisis,  gliko- nenesis  dan  lipogenesis.  Homeostasis  gluko- sa  dipertahankan  oleh  beberapa  hormon.  In- sulin merupakan salah satu hormon yang ber- peran menurunkan konsentrasi glukosa (Has- tuti et al ., 2003).
Gambar 3. Respon glukosa benih udang galah dari semua perlakuan selama penelitian. Huruf kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05).

## 3.4. Histologi Jaringan
Histologi adalah metode yang sensitif dan  secara  biologis  bernilai  untuk  mengukur efek  stres  lingkungan  terhadap  hewan  (jari- ngan).  Perubahan  histopatologi  sebagai  indi- kator  penting  faktor  stres  lingkungan  yang dialami  sebelumnya  dimana  perubahannnya secara  biokimia  dan  fisiologi  (Syahputra, 2010).  Insang  mempunyai  peranan  yang  sa- ngat  penting  karena  berfungsi  untuk  me- ngambil  oksigen  dari  perairan.  Insang  meru- pakan bagian tubuh yang sangat rentan terha- dap  berbagai  macam  gangguan,  baik  parasit, mikroorganisme  patogen  maupun  perubahan lingkungan  karena  insang  ini  langsung  ber- sentuhan dengan air. Epitel insang udang me- rupakan  bagian  utama  untuk  pertukaran  gas, keseimbangan  asam  basa,  regulasi  ion  dan ekskresi nitrogen.
Hasil  histologi  menunjukkan  bahwa terjadi abnormalitas  insang  pada awal peme- liharaan  (Gambar  4).  Histologi  pada  semua perlakuan  pada  saat  transportasi  ditemukan hiperplasia.  Hiperplasia  merupakan  peneba- lan lamela primer karena adanya peningkatan sel-sel  mukus  yang  berfungsi  melapisi  per- mukaan  insang.  Mukus  merupakan  glikogen basa  yang  berfungsi  sebagai  pelindung. Gangguan  kimia  berupa  perubahan  pH  ling- kungan, penumpukan CO 2 , amoniak dan zat- zat  atau  gas  lain  sisa  metabolisme  udang  itu sendiri  maka  terjadi  proliferasi  sel-sel  peng- hasil  mukus  sebagai  bentuk  reaksi  pertaha- nan,    selain  itu  juga  karena  adanya  respons dalam  osmoregulasi  (Robert,  2001).  Hasil histologi  insang  udang  pada  akhir  pemeliha- raan  pascatransportasi  menunjukkan  insang kembali  normal,  kecuali  insang  perlakuan 14,1  g/L  dan  kontrol  yang  masih  teradapat hiperplasia (Gambar 5).
Kerusakan  yang  ringan  pada  benih udang  akibat  penyakit  ini  dapat  mempenga- ruhi  kinerja  udang,  meskipun  tidak  menga- kibatkan  kematian  secara  langsung.  Kepara- han  yang  terjadi  secara  lokal  atau  kerusakan yang  luas  dapat  menjadi  jalan  masuk  bagi patogen-patogen  atau  secara  langsung  dapat mengakibatkan kematian.

## 3.5. Tingkat Kelangsungan Hidup
Tingkat  kelangsungan  hidup  saat  si- mulasi  transportasi  pada  jam  ke-4  perlakuan 4,7 g/L, 9,4 g/L dan 14,1 g/L memiliki TKH sebesar  100  %,  sedangkan  TKH  pada  per- lakuan  0  g/L    dan  kontrol  sebesar  98,33± 0,58%  dan  99,33±0,58%.  Pada  jam  ke-16 sampai  jam ke-24 sudah  mulai terjadi kema- tian pada setiap perlakuan. TKH terendah pa- da jam ke-24 yaitu perlakuan kontrol sebesar 52,67±4,62%, sedangkan TKH tertinggi pada perlakuan  9,4  g/L  dan  4,7  g/L  yaitu  sebesar 88±2%  dan  83,33±4,62%  (Tabel  1).  Hasil analisis  ragam  statistik  menunjukkan  tingkat kelangsungan  hidup  pada  perlakuan  9,4  g/L tidak  berbeda  nyata  (p>0,05)  dengan  perla- kuan  4,7  g/L,  tetapi  berbeda  nyata  dengan perlakuan kontrol (p < 0,05).  Kematian  benih udang  pada  media  air  pengepakan  diakibat- kan oleh tingginya konsentrasi NH 3 dan ting- ginya  konsentrasi  glukosa  benih  udang  saat simulasi pengangkutan.
Hari  pertama  pemeliharaan  terdapat kematian yang tinggi pada perlakuan  kontrol dengan  TKH  sebesar  74±2,82%  yang  berbe- da nyata dengan perlakuan lainnya (Tabel 2). Tingginya  kematian  benih  udang  galah  ini diakibatkan  tingginya  konsentrasi  glukosa pascapengangkutan dan benih  yang tidak da- pat  beradaptasi  dengan  lingkungan  baru. Tingkat  kelangsungan  hidup  tertinggi  benih udang  galah  saat  pemeliharaan  selama  30 hari  yaitu  perlakuan  4,7  g/L  dan  9,4  g/L  se- besar    83±4,24%  dan  82±2,83%,  sedangkan TKH  terendah  pada  perlakuan  kontrol  se- besar  33±4,24%.  Hasil  analisis  ragam  sta- tistik  menunjukkan  tingkat  kelangsungan  hi- dup  pada  perlakuan  4,7  g/L  tidak  berbeda nyata (p>0,05) dengan perlakuan 9,4 g/L, te- tapi  berbeda  nyata  dengan  perlakuan  kontrol (p < 0,05). Kematian benih pada pemeliharaan diakibatkan stres yang dialami saat pengang- kutan,  karena  stres  dapat  menyebabkan  ke- mampuan  imunologi  terhadap  penyakit  me- nurun, gangguan pertumbuhan, kinerja repro- duksi  yang  buruk  dan  kelangsungan  hidup lebih  rendah  (Fotedar et  al., 2006).
Udang normal                                 Perlakuan 0 g/L
Perlakuan 4,7  g                              Perlakuan 9,4  g/L

## Perlakuan 14,1 g/L                             Perlakuan kontrol
Gambar  4. Jaringan  insang  benih udang galah pada awal pemeliharaan  pascatranspotasi. (H) Hiperplasia.

## IV. KESIMPULAN
Pemberian  garam  9,4  g/L,  minyak cengkeh  4,67  µl/L,  zeolit  20  g  dan  karbon aktif 10 g dalam  simulasi transportasi sistem tertutup selama 24 jam memberikan hasil ter- baik  yaitu  tingkat  kelangsungan  hidup  yang
tinggi  yaitu 88±2% pada saat simulasi trans- portasi  dan    82±2,83%  pada  30  hari  pemeli- haraan, kualitas air yang masih dalam kisaran baik,  serta  tingkat  kerja  osmotik  yang  men- dekati isoosmotik, konsentrasi glukosa hemo- lymph yang  mendekati  normal  pascapeme- liharaan  dan  kerusakan  insang  yang  rendah.
Perlakuan 0 g/L Perlakuan 4,7  g/L Perlakuan 9,4  g/L Perlakuan 14,1  g/L Perlakuan kontrol Gambar 5. Jaringan insang benih udang galah pada akhir pemeliharaan pascatranspotasi. H: Hiperplasia.
Tabel 1. Tingkat kelangsungan hidup benih udang galah saat simulasi transportasi.
Jam Perlakuan 0  g/L 4,7 g/L 9,4 g/L 14,1 g/L Kontrol 0 100±0 a 100±0 a 100±0 a 100±0 a 100±0 a 4 98,33±0,58 a 100±0 b 100±0 b 100±0 b 99,33±0,58 b 8 98±0 a 99,33±0,58 b 99±1 ab 99,33±0,58 b 98,33±0,58 ab 12 96,67±2,31 a 99±1 a 98,33±0,58 a 95,67±3,51 a 98±1 a 16 96,67±2,31 bc 98,67±1,53 c 94±8,66 bc 82,67±0,58 a 89,67±2,52 ab 20 92,67±4,93 c 98,33±2,08 c 93,33±1,15 c 69,67±4,62 a 77,33±4,73 b 24 74,33±4,16 c 83,33±4,62 d 88±2 d 62,67±4,51 b 52,67±4,62 a
Huruf kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05).
Tabel 2. Tingkat kelangsungan hidup benih udang galah saat pemeliharaan.
Jam Perlakuan 0  g/L 4,7 g/L 9,4 g/L 14,1 g/L Kontrol 0 100±0 a 100±0 a 100±0 a 100±0 a 100±0 a 1 93±9,90 ab 100±0 b 100±0 b 91±12,73 ab 74±2,83 a 10 81±7,07 b 100±0 b 99±1,41 b 81±12,73 b 57±9,90 a 20 76±0 ab 93±9,90 b 97±4,24 b 68±25,46 ab 48±16,97 a 30 71±1,41 bc 83±4,24 c 82±2,83 c 66±8,49 b 33±4,24 a
Huruf kecil yang berbeda dalam grafik menunjukkan beda nyata (p<0,05).

## DAFTAR PUSTAKA
Adiyana, K., E. Supriyono, M.Z. Junior, dan L.  Thesiana.    2014.    Aplikasi  tekno- logi shelter terhadap respon stress dan kelangsungan  hidup  pada  pendederan lobster  pasir Panulirus  homarus . J.
Kelautan Nasional , 9(1):1-9.
Anandasari,  R.V.    2015.    Evektivitas  zeolit, karbon aktif dan  minyak cengkeh ter- hadap  fisiologis  benih  udang  galah ( Macrobrahium  rosenbergii )  pada transportasi  tertutup  dengan  kepada- tan  tinggi.  [tesis].  Sekolah  Pascasar- jana, Institut Pertanian Bogor.  Bogor. 41hlm.
Boyd.   2012.    Water Quality. In : Lucas,  J.S.
&  P.C.  Southgate.  ( eds .).  Aquacul- ture:  farming  aquatic  animal  and plants, 2nd Edition . Wiley-Blackwell .
Australia. 2-83pp.
Charoendat,  U.,  N.  Areechon,  and  P.  Srisa- poome.    2009. Efficacy  of  synthetic eugenol  as  an  anesthetic  for  nile  tila- pia  ( Oreochromis  niloticus Linn.) .
Kasetsart J., 43:132–140 .
Evans,  D.H.    2008.    Teleost  fish  osmoregu- lation:  what  have  we  learned  since august  krogh,  omer  smith,  and  ancel keys. Am.  J.  Physiol.  Regul.  Integr. Comp. Physiol., 295:704-713.
Fotedar,  S.,  L.  Evans,  and  B.  Jones.  2006. Effect of  holding  duration on  the  im- mune  system  of  western  rock  lobster Panulirus  cygnus.  J.  of  Comparative
Biochemistry and Physiology, Part A. 143:479-487 .
Hastuti,  S.,  E.  Supriyono,  I.  Mokoginta,  dan Subandiyono.  2003.  Respon glukosa darah  ikan  gurami (Osphronemus gouramy,  LAC.) terhadap  stres  peru- bahan suhu lingkungan. J. Akuakultur
Indonesia, 2 (2):73-77.
Himawan, Y. dan I. Khasani.  2010.  Penga- ruh  salinitas  media  terhadap  lama waktu  inkubasi  dan  daya  tetas  telur udang  galah  ( Macrobrachium  rosen- bergii ). Prosiding Forum Inovasi Tek- nologi Akuakultur. Hlm.:43-48.
Junianto.  2003. Teknik penanganan ikan. Pe- nebar Swadaya. Jakarta. 119hlm.
Robert,  R.J.    2001.    Fish  pathology.  W.  B. Saunders. USA. 472p.
Setiyoningsih, P.R.  2014.    Respon  gelondo- ngan  ikan  bandeng  ( Chanos  Chanos ) akibat perubahan salinitas dengan pe- nambahan  kalsium  klorida  (CaCl 2 ) pada  durasi  yang  berbeda. J.  Peneli- tian UNISLA, 5(2):6-17.
Sobirin,  M.,  S.  Agoes,  dan  I.  Bambang. 2015. Pengaruh beberapa salinitas ter- hadap  osmoregulasi  ikan  nila  ( Oreo- chormis niloticus). J. Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, 17(2):1-10. Stickney,  R.R.    1979.    Principles  of  warm- water  aquaculture:  a  willey-inters- cience  publication,  John  Willey  and Sons. New York. 375p.
Supriyono,  E.,  A.  Supendi,  dan  K.  Nirmala. 2007.  Pemanfaatan zeolit dan karbon aktif pada sistem pengepakan tertutup
ikan  corydoras Corydoras  aenus . J. Akuakultur Indonesia , 6(2):135-145.
Supriyono,  E.,  R.  Syahputra,    Ghozali,    D. Wahjuningrum, K. Nirmala, dan A.H. Kristanto.    2010.    Evektifitas  pembe- rian  zeolit,  karbon  aktif  dan  minyak cengkeh  hormon  kortisol  dan  gamba- ran  garah  benih  ikan  patin Pangasio- nodon  hyppopthalamus pada  pe- ngangkutan  dengan  kepadatan  tinggi. Ilmu Kelautan , 15(2):103-112.
Swann.  1993.  Transportation of fish in bags north  central  regional.  Aquaculture Center  Purdue  University,  in  coope- ration with USDA. 1-4pp.
Syahputra, R.  2010.  Respon fisiologi benih ikan  patin Pangasius  hypopthalmus pada  pengangkutan  sistem  tertutup dengan  pemberian  zeolit,  arang  aktif dan  minyak  cengkeh.  [tesis].  Sekolah Pascasarjana,  Institut  Pertanian  Bo- gor. Bogor. 78hlm.
Wedemeyer, G.A. and W.T. Yasutake.  1977. Clinical  methods  for  the  assessment of  the  effects  of  environmental  stress on  fish  health.  Volume  ke-89.  Wa- shington  DC:  Department  of  the  In- terior Fish and Wildlife Service. 18p. Wibowo,  S.  1993.  Penerapan  teknologi  pe- nanganan  dan  transportasi  ikan  hidup di Indonesia. Sub Balai Penelitian Pe- rikanan Laut Slipi. Jakarta. 9hlm.
Zhang, Z., and P. Perschbacher. 2003.  Com- parasion  of  the  zeolite  sodium  cha- bazite  and  activated  charcoal  for  am- monia  control  in  sealed  containers. J.
Asian Fisheries Science , 16:141-145. Zonneveld,    N.E.A.,  Huisman,  and    J.H. Boon.   1991.   Prinsip-prinsip  budida- ya ikan. PT Gramedia Pustaka Utama. Jakarta. 318hlm.
Diterima: 16 November 2015 Direview: 20 November 2015 Disetujui: 19 April 2016