Abstrak —Pasir  pantai  memiliki  struktur  tanah  lepas,  KTK rendah,  dan  kesuburan  rendah.  Pengolahan  pasir  pantai sebagai  media  tanam  perlu  dilakukan  dengan  bantuan  bahan organik  yaitu  pupuk  AMB-P07  dan  mikoriza  arbuskula  agar tanah  tersebut  memenuhi  syarat  tumbuh  komoditas  dan meningkatkan hasil panen tanaman holtikultura. Salah satunya yaitu  terong  ungu  yang  sangat  diminati  masyarakat.  Tujuan dari  penelitian  ini  adalah  mengetahui  pengaruh  inokulasi mikoriza  arbuskula  pada  media  tan  AMB-P07  terhadap produksi  buah  dan  aktivitas  antioksidan S.  melongena var. Mustang  F1.  Metode  pada  penelitian  ini  meliputi  pemanenan buah, uji kadar flavonoid dan aktivitas antioksidan yang diukur dengan metode spektrofotometri, dan uji infeksi mikoriza pada akar  melalui  teknik  pewarnaan  dengan  trypan  blue.  Hasil penelitian  menunjukkan  perlakuan  media  tanam  AMB-P07 terhadap  jumlah  dan  berat  buah  terong  tidak  berpengaruh nyata. Hasil kadar flavonoid dan aktivitas antioksidan tertinggi pada  perlakuan  media  tanam  AMB-P07  yang  diinokulasi mikoriza 25 gr menunjukkan nilai sebesar 35,41 mgEQ/100gr, sedangkan  persen  inhibisi  83,60%,  inokulasi  mikoriza arbuskula  pada  media  tanam  AMB-P07  tidak  berpengaruh nyata pada infeksi akar.
Kata  Kunci —AMB-P07,  Antioksidan,  Infeksi,  Mikoriza, S. melongena.

## I. PENDAHULUAN
NDONESIA  dikenal  sebagai  salah  satu  negara  agraris, dimana  memiliki  areal  pertanian  yang  sangat  luas  dan sebagian  besar  penduduknya  bermata  pencarian  sebagai petani.  Tetapi  dewasa  ini  luas  lahan  kritis  di  Indonesia diperkirakan sekitar 30-40 juta hektar [1]. Keadaan ini akan semakin parah karena konversi fungsi lahan ke non pertanian [2].  Kerusakan  yang  lebih  parah  terdapat  pada  lahan  bekas tambang  (batu  bara,  emas,  timah  dan  lain-lainnya).  Tanah lapisan  atas  ( top  soil )  hilang,  kemampuan  menahan  air rendah, dan sangat miskin  hara dan kandungan  logam berat relatif  tinggi.  Akibatnya,  pertumbuhan  dan  perkembangan tanaman sangat terhambat sehingga produktivitasnya sangat rendah.  Oleh  karena  itu,  perlu  dilakukan  upaya  untuk memperoleh  lahan  pertanian  baru.  Salah  satu  peluangnya adalah pemanfaatan lahan pasir pantai. Mengingat luas lahan pantai sangat luas dan belum termanfaatkan secara optimal.
Media  tanam  AMB-P07  merupakan  salah  satu  media tanam yang terdiri dari pasir pantai, kompos limbah tanaman dan  kompos  daun.  Aplikasi  pada  tanaman  yaitu  5:2:3. Komposisi pupuk organik AMB-07 terdiri dari limbah tomat, rimpang  jahe,  dan  rumput  gajah  serta  dengan  penambahan EM4  ( effective  microorganism) [3].  Bantuan  inokulasi mikoriza arbuskula diharapkan agar tanah tersebut memenuhi
syarat  tumbuh  komoditas,  meningkatkan  hasil  panen,  dan meningkatkan nutrisi.
Salah satu komoditi hortikultura yang bisa dibudidayakan di  pasir  pantai  adalah  terong  ungu  varietas  Mustang  F1. Terong ungu memiliki kandungan serat makanan yang baik, seperti vitamin B1 dan B6, kalium, magnesium dan fitokimia terutama  senyawa  fenolik  dan  flavonoid  yang  memberikan manfaat  kesehatan  [4].  Buah  terong  memiliki  aktivitas antioksidan dan berada di antara 10 sayuran teratas dalam hal kapasitas antioksidan [5]. Antioksidan sebagai senyawa yang mampu  menangkal  atau  meredam  dampak  negatif  oksidan dalam tubuh [6].
Penelitian ini bertujuan untuk mengkaji pengaruh inokulasi mikoriza  arbuskula  pada  media  tanam  AMB-P07  terhadap produksi  buah  dan  kandungan  antioksidan  terong  ungu  var. Mustang F1.

## B. Rumusan Masalah
Rumusan  masalah  pada  penelitian  ini  adalah  bagaimana pengaruh  inokulasi  mikoriza  arbuskula  pada  media  tanam AMB-P07  terhadap  produksi  buah  dan  kandungan antioksidan terong ungu var. Mustang F1.

## C. Batasan Masalah
Berdasarkan  latar  belakang  diatas  maka  batasan  masalah pada penelitian ini adalah:
1. Media tanam yang digunakan adalah pasir pantai putih ukuran  30  mesh  diperoleh  dari  toko  bangunan  di Surabaya.
2. Benih  terong  ungu  yang  digunakan  adalah Solanum melongena var. Mustang F1) yang diperoleh dari Trubus Surabaya.
3. Mikoriza  yang  digunakan  pada  penelitian  ini  berupa pupuk mikoriza spesies Glomus sp. yang diperoleh dari Laboratorium Hama dan Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya Malang.
4. Penelitian dilakukan dalam skala lapang di green house dimana faktor lingkungan diabaikan pengaruhnya.
5. Bahan  yang  digunakan  sebagai  pengomposan  AMB- P07 yaitu, limbah tomat, rimpang jahe dan akar rumput gajah diabaikan varietasnya.
6. Pengaruh mikroorganisme pada kompos daun dan EM4 diabaikan pengaruhnya.
7. Pengujian yang dilakukan meliputi uji infeksi mikoriza pada  akar,  pengamatan  berat  dan  jumlah  buah  terong, uji total flavonoid, dan uji aktivitas antioksidan.

## Inokulasi Mikoriza Arbuskula pada Media Tanam AMB-P07 terhadap Produksi Buah dan Aktivitas Antioksidan Terong Ungu Solanum melongena var. Mustang F1)
A. Sanggilora, S. Nurhatika dan A. Muhibuddin Departemen Biologi, Fakultas Sains, Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS)
e-mail : nurhatika@bio.its.ac.id
I

## D. Tujuan
Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah  mengetahui  pengaruh inokulasi  mikoriza  arbuskula  pada  media  tanam  AMB-P07 terhadap produksi buah dan aktivitas antioksidan terong ungu var. Mustang F1.

## E. Manfaat
Manfaat  yang  diperoleh  dari  penelitian  ini  adalah  dapat memberikan  informasi  mengenai  inokulasi  mikoriza arbuskula  pada  media  tanam  AMB-P07  terhadap  produksi buah  dan  kandungan  antioksidan  terong  ungu  var.  Mustang F1. Bantuan  inokulasi  mikoriza arbuskula diharapkan dapat memperbaiki  sifat  tanah  pasir  pantai  dan  meningkatkan antioksidan dan hasil panen buah terong ungu.

## II. METODOLOGI

## A. Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan  Februari  2018 hingga  bulan  Mei  2018  di  Green  House  Urban  Farming, Institut Teknologi Sepuluh Nopember, Surabaya. Pengamatan sampel tanah dilakukan di Laboratorium Jurusan Tanah Fakultas
Pertanian Universitas
Brawijaya.
Pengamatan  hasil  dilakukan  di  Laboratorium  Biosains  dan Rekayasa Tumbuhan Departemen Biologi, Institut Teknologi Sepuluh Nopember, Surabaya.

## B. Metode yang Digunakan

## 1) Pengomposan Pupuk Organik AMB-07
Pengomposan pupuk organik AMB-07 terdiri dari limbah buah  tomat,  rimpang  jahe  dan  akar  rumput  gajah  yang difermentasi dengan EM-4. Pupuk AMB-07 yang dibutuhkan dalam  5  kg  media  tanam  adalah  1  kg.  Limbah  tomat dibutuhkan sebanyak 500 gr, rimpang jahe 250 gr yang sudah diblender dan akar rumput gajah 250 gr dipotong kecil-kecil. Menyiapkan  cairan  EM4  sebanyak  1  ml  yang  dilarutkan dengan air 1 liter air dan gula 1 gr. Campuran EM4 diinkubasi selama  2  jam.  Bahan-bahan  dasar  kompos  dimasukkan  ke dalam drum. Campuran EM4 dituang kedalam bahan-bahan kompos dan diaduk hingga rata. Selanjutnya campuran bahan ditutup  lalu  diinkubasi  selama  5  hari.  Kelembaan  dan  suhu serta sirkulasi udara pada proses pengomposan dijaga dengan disemprot sedikit air setidaknya seminggu sekali dan kompos diaduk secara merata [3].

## 2) Persiapan Media Tanam dan Benih Terong
Media  tanam  yang  dibutuhkan  dalam  setiap  perlakuan adalah  5  kg.  Media  tanam  AMBP-07  yang  diinokulasi mikoriza  terdiri  dari  pasir  pantai  putih  ukuran  30  mesh sebanyak 2,5 kg. Pupuk AMB-07 ditambahkan sebanyak 1 kg dan kompos daun sebanyak 1,5 kg. Semua bahan dimasukkan ke  dalam  polybag,  kemudian  diaduk  secara  merata.  Media tanam  kontrol  1  (K1)  terdiri  dari  tanah,  pasir,  dan  pupuk kandang  perbandingan  1:1:1  masing-masing  terdiri  dari  1,7 kg  yang  telah  dicampur  secara  merata  dan  dimasukkan  ke dalam  polybag  (Hartoyo  dan  Anwar,  2018).  Media  tanam kontrol  2  (K2)  dan  kontrol  5  (K5)  terdiri  dari  pasir  pantai putih sebanyak 5 kg. Media tanam kontrol 3 (K3) terdiri dari pasir  pantai  putih  sebanyak  2,5  kg,  kompos  limbah  tomat sebanyak 1 kg dan ditambahkan kompos daun sebanyak 1,5 kg  ke  polybag.  Semua  bahan  diaduk  hingga  merata.  Media tanam kontrol 4 (K4) terdiri dari pasir pantai sebanyak 5kg. Pupuk  NPK  sebanyak  3  gr  ditugal  samping  kanan  dan  kiri tanaman dengan kedalaman 5 cm dengan jarak ± 20 cm dari
batang tanaman [7]. Persiapan benih terong dengan direndam air selama 24 jam.

## 3) Analisis Tanah Awal
Analisis  tanah  awal  dilakukan  sebelum  tanam  meliputi analisis rutin tanah, yaitu untuk mengetahui kondisi fisik dan kimia tanah sebelum dijadikan media tanam. Sifat fisik yang diukur  adalah  tekstur  tanah,  pH  tanah,  dan  suhu  tanah. Sedangkan sifat kimia tanah  yang diukur adalah kandungan bahan organik (C-organik), tekstur, kadar air, dan kandungan NPK [8].

## 4) Inokulasi Mikoriza dan Penanaman Benih Terong Ungu
Level  pemberian  mikoriza  adalah  sesuai  perlakuan masing-masing  yaitu  5  gr,  10  gr,  15  gr,  20  gr,  dan  25  gr. Inokulasi  mikoriza  dilakukan  dengan  menggunakan  sistem lapisan.  Media  tanam  diambil  dengan  ketebalan  3  cm, kemudian  di  atasnya  dilapisi  pupuk  mikoriza  dengan  dosis sesuai perlakuan. Pupuk mikoriza dilapisi lagi dengan media tanam  [9].  Benih  terong  ungu  dimasukkan  dalam  media tanam  dan  dilapisi  dengan  media  tanam.  Kontrol  5  (K2) diinokulasikan pupuk mikoriza sebanyak 15 gr.

## 5) Pemeliharaan Tanaman Terong Ungu
Tanaman terong ungu disiram setiap hari sebanyak 2 kali sehari pada saat pagi dan sore hari.
Tanaman terong ungu diaplikasikan pupuk susulan dengan pupuk kompos daun 6 gr dan pupuk AMB-P07 3 gr yang telah dicampurkan.  Kontrol  1  pemupukan  ulang  menggunakan pupuk  kandang.  Pupuk  susulan  diaplikasikan  saat  tanaman berumur  2  minggu  setelah  tanam  (MST).  Pemupukan selanjutnya  dilakukan  dengan  selang  waktu  10  hari  hingga masa  panen  [10].  Pupuk  ditugal  samping  kanan  dan  kiri tanaman dengan kedalaman 5 cm dengan jarak ± 20 cm dari batang tanaman [7].
Pemasangan  ajir  atau turus  dari  bambu  dilakukan  seawal mungkin  dengan  tinggi  50-80  cm  dan  lebar  2  cm.  Turus ditancapkan  dekat  dengan  batang,  kemudian  batang  atau cabang  terong  diikat  dengan  tali  rafia  membentuk  simpul angka  8  pada  turus.  Penyiangan  gulma  dan  rumput  liar dilakukan  setiap  saat  bilamana  ada  gulma  yang  tumbuh. seleksi dahan dilakukan dengan mempertahankan dua cabang di  bawah  bunga  pertama,  sedangkan  cabang  yang  tumbuh dibawahnya  dipangkas  [11].  Pengendalian  OPT  dengan disemprot pestisida 2 minggu sekali.
Buah terong ungu bisa dipetik 12 hari setelah pembuahan pada  semua  perlakuan  meskipun  dalam  perbedaan  waktu berbuah.  Buah  dipanen  pada  pagi  dan  sore  hari  untuk menghindari  panas  matahari  yang  dapat  mengkeriputkan buah dan menurunkan kualitas hasil. Panen dilakukan dengan cara  manual  yaitu  buah  dipetik  dengan  memotong  tangkai buahnya  dengan  menggunakan  pisau  atau  gunting.  Buah terong ditimbang beratnya dan dicatat.

## 6) Ekstraksi Buah Terong
Buah  terong  diekstraksi  berdasarkan  [12] dengan  cara maserasi.  Ekstraksi  bahan  aktif  dilakukan  menggunakan pelarut metanol. Buah terong segar dibersihkan dengan cara dicuci  untuk  menghilangkan  pengotor  yang  melekat  pada kulit. Buah terong dipotong kecil-kecil tanpa menghilangkan kulit  buahnya,  selanjutnya  dibungkus  alumunium  foil  dan dioven  pada  suhu  60 0 C.  Buah  yang  telah  kering  dihaluskan menggunakan blender. Sampel bubuk ditimbang sebanyak 10 gr. Kemudian bubuk diekstraksi dengan 100 ml metanol 80% selama  dua  setengah  hari  pada  suhu  ruang  dengan pengocokan sesekali. Kemudian sampel disaring menggunakan kertas saring sehingga diperoleh filtrat. Filtrat
disimpan dalam botol kaca gelap dan disimpan pada tempat yang terhindar dari cahaya [13].
7) Uji Kadar Flavonoid Total
Pembuatan larutan standar kuersetin dengan ditimbang 10 mg  baku  standar  kuersetin  dan  dilarutkan  dalam  10  ml metanol p.a untuk 1000 ppm. Dari larutan standar kuarsetin 1000  ppm,  kemudian  dipipet  1  ml  dan  dilarutkan  dalam  10 mL  metanol p.a untuk 100 ppm, kemudian dibuat beberapa konsentrasi 10 ppm, 20 ppm, 30 ppm, 40 ppm, dan 50 ppm. Masing-masing  konsentrasi  larutan  standar  kuersetin ditambahkan 3 ml metanol. 0,2 ml AlCl 3 10%, 0,2 ml kalium asetat  1  M,  dan  dicukupkan  dengan  aquades  sampai  10  ml. Setelah itu diinkubasi selama 30 menit pada suhu kamar dan ukur  absorbansinya  pada  spektrofotometri  UV-Vis  dengan panjang gelombang 431 nm [14].
Pengujian  kadar  flavonoid  total  ekstrak  buah  terong diambil 1 ml dan ditambahan 3 ml  metanol pada labu ukur. 0,2 ml AlCl 3 10% dan ditambahkan 0,2 ml kalium asetat, dan dicukupkan dengan akuades sampai 10 ml. Larutan disimpan 30 menit pada tempat gelap pada suhu kamar. Absorbansinya di  ukur  pada  spektrofotometri  UV-Vis  dengan  panjang gelombang  431  nm.  Sampel  dibuat  dalam  3  replikasi  untuk setiap analisis dan dihitung rata–ratanya
Hasil  rata-rata  sampel  yang  telah  didapat  dimasukkan kedalam  persamaan  garis  liniear  sehingga  diperoleh  kadar total  flavonoid.  Berdasarkan  hasil  penelitian  [15]  kadar flavonoid  dapat  dihitung  menggunakan  rumus  sebagai berikut:
F = c x V m (1)
Keterangan:
F  : Jumlah flavonoid metode AlCl 3 c  : kesetaraan kuersetin (µm/ml) m : berat sampel (g)

## 8) Uji Aktivitas Antioksidan
Pada  tahap  awal  pengujian  dibuat  terlebih  dahulu  kurva kalibrasi  untuk  larutan  DPPH  0,1  M.  Sebanyak  0,004  mg DPPH dimasukkan kedalam labu ukur 250 ml dan dilarutkan dengan  pelarut  methanol  80%  sebanyak  100  ml.  Blanko terdiri  dari  80%.  Pembuatan  larutan  kontrol  DPPH  dengan cara  900  µl  ditambahkan  methanol  80%  sebanyak  300  µl. kemudian  sampel  dihomogenkan  dan  diinkubasi  30  menit pada  suhu  ruang.  Selanjutnya  diukur  serapannya  pada panjang gelombang 517 nm.
Ekstrak sampel diambil sebanyak 300 µl dan ditambahkan 900  µl  larutan  DPPH  0,1  M.  Campuran  tersebut diinkubasi selama  30  menit  pada  suhu  ruang,  kemudian  diukur serapannya  menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis  pada panjang gelombang 517 nm. Presentase aktivitas antioksidan dihitung menggunakan rumus berikut [16]:
% inhibisi = Ak −As Ak x 100%
Keterangan: Ak  : Absorbansi kontrol As  : Absorbansi sampel

## 9) Pengamatan Infeksi Mikoriza Pada Akar
Pengamatan  infeksi  mikoriza  pada  akar  tanaman  terong ungu dilakukan pembuatan preparat akar semi permanen. Hal pertama  yang  dilakukan  mengambil  sampel  akar  terong. Bagian akar dan tajuk dipisahkan menggunakan scalpel . Akar
yang  telah  terpisah  kemudian  dicuci  dengan  air  dan  dibilas kembali menggunakan aquades. Akar dikeringkan menggunakan  tisu.  Akar  kemudian  direndam  ke  dalam larutan  KOH  10%  selama  24  jam.  Selanjutnya  akar  dicuci dengan  air  5-10  menit.  Kemudian  direndam  ke  dalam  HCL 2%  selama  24  jam.  Larutan  HCl  kemudian  dibuang.  Akar diwarnai dengan Lactophenol Trypan Blue selama 15 menit. Akar  kemudian  dipotong  1  cm  sebanyak  10  potong  dan disusun  pada  kaca  preparat.  Preparat  akar  ditetesi  dengan laktogliserol.  Selanjutnya  diamati  di  bawah  mikroskop  dan dihitung  persen  infeksi  mikoriza  [17].  Persen  infeksi mikoriza  pada  akar  dapat  dihitung  dengan  rumus  sebagai berikut:
% infeksi = ∑ Akar Terinfeksi ∑ Akar Yang Diamati x 100%
(2) 10) Analisis Data
Penelitian menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 10 perlakuan terdapat 3 pengulangan. Hipotesis pada penelitian ini adalah sebagai berikut:
1. H0  : inokulasi mikoriza pada media tanam AMB-P07 tidak  berpengaruh  nyata  terhadap  hasil  produksi  berat terong ungu ( Solanum melongena var. Mustang F1).
H1:  inokulasi  mikoriza  pada  media  tanam  AMB-P07 berpengaruh nyata terhadap hasil produksi berat terong ungu ( Solanum melongena var. Mustang F1).
2. H0:  inokulasi  mikoriza  pada  media  tanam  AMB-P07 tidak berpengaruh nyata terhadap infeksi mikoriza pada akar terong ungu ( Solanum melongena var. Mustang F1) H1:  inokulasi  mikoriza  pada  media  tanam  AMB-P07 berpengaruh nyata terhadap infeksi mikoriza pada akar terong ungu ( Solanum melongena var. Mustang F1). Perlakuan  dosis  mikoriza  pada  tanaman  terong  dapat ditunjukkan pada Tabel 1.
Tabel 1.
Perlakuan Dosis Mikoriza Pada Tanaman Terong Perlakuan Keterangan K1 Tanah + pasir + pupuk kandang K2 Pasir pantai K3 Media tanam AMB-P07 K4 Pasir pantai + pupuk NPK 3 gr K5 Pasir pantai + pupuk mikoriza 15gr A Media tanam AMB-P07 + Mikoriza 5 gr B Media tanam AMB-P07 + Mikoriza 10 gr C Media tanam AMB-P07 + Mikoriza 15 gr D Media tanam AMB-P07 + Mikoriza 20 gr
E Media tanam AMB-P07 + Mikoriza 25 gr

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN

## A. Produksi Buah Terong
Hasil  analisis  ragam  menunjukkan  bahwa  pengaruh inokulasi  mikoriza  arbuskula  pada  media  tanam  AMB-P07 tidak berpengaruh nyata tehadap jumlah buah dan berat buah (Tabel  2). Hal tersebut dapat  ditunjukkan dengan perlakuan A,  B,  C,  D,  E  dengan  perlakuan  K1,  K3,  dan  K4  tidak memiliki pengaruh yang nyata.
Unsur  nitrogen  sangat  dibutuhkan  oleh  tanaman  terong dalam  jumlah  yang  banyak.  Hal  tersebut  karena  tanaman terong memiliki waktu tumbuh yang panjang serta hasil yang tinggi.  Unsur  N  bagi  tanaman  terong  sangat  mempengaruhi hasil panjang buah, jumlah buah per tanaman, dan berat buah [18]. Hal  ini karena  nitrogen berperan dalam  meningkatkan pertumbuhan  tunas  dan  daun  yang  berperan  dalam  proses
sintesis  karbohidrat  dan  protein  menjadi  lebih  efisien  pada buah  yang  sedang  berkembang,  dan  mungkin  telah mengakibatkan  peningkatan  jumlah  dan  panjang  sel  secara individual,  sehingga dapat  meningkatkan ukuran  buah [19]. Nitrogen menjadi penyeimbang pemanfaatan kalium,  fosfor dan unsur-unsur hara lainnya dalam tanah, ketersediaan hara dalam  jumlah  yang cukup tidak dapat  dimanfaatkan dengan efisien jika tanaman kekurangan unsur nitrogen [20].
Kondisi  tersebut  menunjukkan  bahwa  pada  media  tanam ideal (K1) terong diduga telah tersedia unsur yang dibutuhkan oleh tanaman. Media tanam yang digunakan yaitu campuran tanah, pasir dan kompos. Kompos memiliki unsur hara makro dan  mikro  yang  lengkap,  walaupun  dalam  jumlah  yang sedikit [21].
Tabel 2.
Hasil Pengamatan Jumlah Buah Dan Berat Buah S. melongena var. Mustang F1. Perlakuan Jumlah Buah (Buah) Berat Buah (g) K1 2,67 a
107,95 a
K2 0 b 0 b K3 2 ab 72,23 a K4 1,67 ab 28,11 b K5 0 b 0 b
A 2 ab 71,43 a B 2 ab 72,38 a C 2 ab 80,87 a D 2,67 a
101,93 a
E 3 a 123,1 a
Keterangan: Notasi huruf yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata dan untuk huruf yang berbeda menunjukkan berbeda nyata.
Media  tanam  AMB-P07  memiliki  unsur  hara  yang dibutuhkan  tanaman  diantaranya  N  yang  dihasilkan  dari bahan dasar pupuk yaitu tomat dan akar rumput gajah. Selain itu  adanya  peran  EM-4  pada  media  tanam  membantu menyediakan  unsur  hara  yang  dibutuhkan  tanaman, memperbaiki sifat fisik, kimia dan biologis tanah [21].
Pada  perlakuan  pasir  pantai  (K2)  dan  pasir  pantai  yang diinokulasi mikoriza 15 gram (K5) tidak menghasilkan buah hingga  masa  panen.  Hal  tersebut  disebabkan  media  tanam yang  digunakan  adalah  pasir  pantai  saja.  Hal  tersebut menunjukkan  pasir  pantai  sebagai  media  tanam  belum memenuhi kebutuhan unsur hara bagi tanaman terong ungu. Hal  ini  berdasarkan  analisis  kimia  pasir  pantai.  Defisiensi unsur  hara  dapat  menyebabkan  pertumbuhan  tanaman terganggu.
Pemanfaatan  media  tanam  AMB-P07  yang  bertujuan memperbaiki  sifat  fisik,  kimia  dan  biologis  tanah.  Menurut [22]  lahan  produktif  semakin  sempit  karena  bekas pertambangan  dan  eksploitasi  yang  tidak  terkendali,  maka salah  satu  upaya  untuk  mengembalikan  lahan  pertanian adalah  dengan  melakukan  usaha  ekstensifikasi  pertanaman dengan  memanfaatkan AMB-P07  [3]. Upaya tersebut untuk meningkatkan  ketersediaan  dan  serapan  unsur  hara  oleh tanaman terong yang selanjutnya tanaman dapat tumbuh dan berkembang  dengan  baik  [23].  Tanah  tidak  hanya menyediakan  unsur-unsur  hara  dalam  bentuk-bentuk  yang dikehendaki  tanaman,  tetapi  juga  menyediakannya  dalam keadaan  seimbang  sesuai  dengan  jumlah  yang  dibutuhkan tanaman.  Oleh  karena  itu,  pemupukan  sangat  diperlukan untuk membantu pertumbuhan tanaman.

## B. Kadar Flavonoid Total
Pengukuran  kandungan  total  flavonoid  dilakukan  dengan menggunakan metode kolorimetri, menggunakan spektrofotometri UV-Vis. Pengukuran absorbansi  dilakukan
sebanyak tiga kali (triplo) dengan kuersetin sebagai senyawa standar. Hasil pengaruh inokulasi mikoriza pada media tanam AMB-07  terhadap  kandungan  flavonoid  total  pada  ekstrak buah Solanum  melongena var.  Mustang  ditunjukkan  pada Gambar 1.
Gambar 1. Hasil Uji Kadar Flavonoid S. melongena var. Mustang F1.
Berdasarkan  Gambar  1  dapat  dilihat  bahwa  kadar flavonoid  tertinggi  pada  media  tanam  AMB-07  dengan inokulasi  mikoriza  25  gr  sebesar  35,41  mgEQ/100gr.  Hasil kadar flavonoid terendah adalah kontrol 2 dan kontrol 5, hal ini  disebabkan  karena  tanaman  tidak  menghasilkan  buah hingga masa panen.
Kadar  flavonoid  semakin  meningkat  seiring  pemberian dosis  mikoriza.  Kadar  flavonoid  pada  tanaman  mikoriza dimodulasi  oleh  tahap  perkembangan  simbiosis  AM  [24]. Selama  penetrasi  akar,  pembentukan  jamur  AM  di  akar, tingkat intermediet sejumlah flavonoid sudah terdeteksi. Pada tahap  akhir  kolonisasi  akar  flavonoid  ditemukan  dalam jumlah yang sangat tinggi [25].
Media tanam AMB-P07 pada bahan dasar tomat dan jahe yang  memiliki  kandungan  flavonoid  yang  sama  yaitu kuersetin  dan  rutin  [26][27].  Mikoriza  yang  diinokulasikan pada media tanam tersebut berperan dalam menyerap nutrisi dari pupuk sehingga tanaman mampu memproduksi fitokimia seperti  flavonoid  [28].  Perlakuan  kontrol  3  menunjukkan hasil  yang  lebih  rendah  dibanding  kontrol  4  media  pasir pantai yang diberi pupuk NPK. Hasil tersebut sesuai dengan penelitian Suyanto dan Yusrizal [29] bahwa pemberian NPK memberikan  hasil  kadar  flavonoid  yang  lebih  tinggi dibanding  penggunaan  pupuk  organik.  Hal  ini  disebabkan karena dalam kedua faktor tersebut mengandung unsur-unsur makro  maupun  mikro  yang  secara  fisiologis  akan mempengaruhi pertumbuhan hasil dan kandungan flavonoid.
Peningkatan kadar flavonoid sangat dipengaruhi tersedianya unsur N yang dapat mempengaruhi peningkatan flavonoid.  Jalur  shikimat  yang  menghubungkan  biosintesis favonoid  dan  metabolisme  N  di  dalam  tanaman  akan mengkatalisis  karbohidrat  yang  berasal  dari  jalur  glikolisis dan  pentosa  fosfat  untuk  mensintesis  asam  amino  aromatik (fenilalanin, tirosin, dan triptofan) [30].
Flavonoid  dibutuhkan  tubuh  sebab  memiliki  aktivitas antioksidan, antibakteri, antivirus, antiradang, antialergi, dan antikanker [14]. Berdasarkan penelitian [16] kadar flavonoid terong ungu organik yang dimaserasi dengan methanol 80% menunjukkan  hasil  9,34  mgEQ/100  gr.  Sehingga  perlakuan media  AMB-P07  yang  diinokulasi  mikoriza  25  gr  mampu menghasilkan  buah  terong  dengan  kualitas  buah  dengan kandungan flavonoid yang tinggi.
Flavonoid  dibutuhkan  tubuh  sebab memiliki  aktivitas antioksidan, antibakteri, antivirus, antiradang, antialergi, dan antikanker [17]. Perlakuan media AMB-P07 yang diinokulasi mikoriza  25  gr  mampu  menghasilkan  buah  terong  dengan kualitas buah dengan kandungan flavonoid yang tinggi.

## C. Aktivitas Antioksidan
Pengukuran  aktivitas  antioksidan  pada  buah  terong menggunakan  DPPH.  Persentase  inhibisi  antioksidan tertinggi  didapati  pada  perlakuan  media  tanam  AMB-07 dengan  inokulasi  mikoriza  25  g  sebesar  83,60%.  Pendapat [31]  menyatakan  komponen  flavonoid  memiliki  peran terhadap  aktivitas  antioksidannya.  Tanaman  kaya  flavonoid bisa  menjadi  sumber  antioksidan  yang  baik  yang  akan membantu  meningkatkan  kapasitas  antioksidan  secara keseluruhan [32]. Semakin tinggi nilai aktivitas antioksidan, maka  hubungan  kedua  variabel  tersebut  menyatakan berbanding  lurus.  Artinya  flavonoid  berkontribusi  terhadap aktivitas antioksidan [32]. Hasil pengaruh inokulasi mikoriza pada  media tanam  AMB-P07 terhadap  aktivitas antioksidan pada  ekstrak  buah Solanum  melongena var.  Mustang ditunjukkan pada Gambar 2.
Gambar 2. Inhibisi Antioksidan Pada Buah S. melongena var. Mustang F1.
Perlakuan  K3  media  tanam  AMB-P07  menunjukkan persen inhibisi yang lebih tinggi (65,81%) dibandingkan  K4 dengan pemupukan NPK menunjukkan hasil persen inhibisi 45,64  %.  Berdasarkan  penelitian  [35].  Penggunaan  pupuk organik mengaktifkan banyak spesies organisme hidup yang melepaskan fitohormon dan dapat merangsang pertumbuhan dan nutrisi tanaman.
Senyawa  antioksidan  merupakan  senyawa  yang  mampu menangkal  atau  meredam  dampak  negatif  oksidan  dalam tubuh.  Antioksidan  bekerja  dengan  cara  mendonorkan  satu elektronnya kepada senyawa yang bersifat oksidan, sehingga aktivitas senyawa oksidan dapat dihambat [6]. Terong ungu memiliki  antioksidan  alami  yang  lengkap.  Hal  tersebut memungkinkan  terong  ungu  untuk  dimanfaatkan  sebagai bahan  baku  pembuatan  antioksidan.  Terong  juga  diketahui bagus  untuk  kesehatan  jantung,  menekan  kolesterol  dan diabetes [33].

## D. Persentase Infeksi Mikoriza Pada Akar
Hasil  pengamatan  yang  diperoleh  setelah  dilakukan pewarnaan  pada  akar  tanaman  terong  menunjukkan  bahwa semua akar tanaman terong yang diinokulasi dengan pupuk mikoriza  dapat  terinfeksi.  Tetapi  berdasarkan  uji  lanjutan pengaruh  inokulasi  mikoriza  arbuskula  pada  media  tanam AMB-07  tidak  berpengaruh  nyata  pada  infeksi  akar.Hasil pengamatan  infeksi  mikoriza  pada  akar  tanaman Solanum melongena var. Mustang F1 ditunjukkan pada Tabel 2.
Berdasarkan  Tabel  2  pengamatan  infeksi  mikoriza  pada akar terhadap perlakuan Kontrol, A, B, C, D dan E dilakukan setiap  dua  minggu  sekali  sebanyak  empat  kali.  Perlakuan Kontrol  2  dan  Kontrol  4  tidak  ditemukan  adanya  infeksi mikoriza pada akar, dari minggu ke- 4 hingga minggu ke-10. Perlakuan Kontrol 1, Kontrol 3, Kontrol 5, A, B, C, D, dan E setiap minggu pengamatan mengalami peningkatan persentase infeksi mikoriza.
Meningkatnya  persentase  infeksi  diakibatkan  semakin banyak jumlah pupuk mikoriza yang ditambahkan ke dalam media  tanam,  sehingga  menyebabkan  semakin  meningkat pula  infeksi  yang  terjadi  [34].  Peningkatan  derajat  infeksi mikoriza dapat mengindikasi semakin aktif mikoriza tersebut menginfeksi  akar  dan  memperluas  daerah  serapan  akar terhadap air dan unsur hara [35].
Tabel 2.
Hasil Pengamatan Persentase Infeksi Mikoriza Pada Akar Tanaman S. melongena var. Mustang F1.
Perlakuan Persentase Infeksi Akar (%) Minggu ke-4 Minggu ke-6 Minggu ke-8 Minggu ke- 10 K1 3,33 6,67 c 26,27 c 43,33 cd K2 0 0 c 0 d 0 e K3 3,33 10 bc 23,33 cd 36,67 d K4 0 0 c 0 d 0 e
K5 3,3 10 bc 26,67 c
36,67 d A 3,3 16,7 abc 36,7 bc 60 bc B 3,3 20 abc 53,3 ab 76,7 ab C 6,7 23,3 abc 63,3 a 83,3 a D 10 33,3 ab 70 a 86,7 a E 13,3 36,7 a 73,3 a 90 a
Penggunaan  mikoriza  efektif  digunakan  pada  saat  tanaman masih  di  persemaian  dimana  akarnya  belum  mengalami penebalan [36]. Kolonisasi akar ditandai dengan adanya hifa, vesikula  dan  arbuskula  atau  salah  satu  dari  ketiganya  [37]. Hifa  memiliki  diameter  yang  kecil  (2-5μm)  memungkinkan jamur  untuk  mengakses  pori-pori  tanah  yang  tidak  dapat dieksploitasi  oleh  akar,  sehingga  memungkinkan  tanaman untuk  mengeksplorasi  volume  tanah  yang  lebih  besar  [38]. Sehingga  perakaran  lebih  mudah  berkembang  dan memanjang  karena  mikoriza  dapat  mengemburkan  tanah disekitar perakaran [34].
Tanaman terong ungu ( Solanum melongena var. Mustang F1)  bersimbiosis  dengan  jamur  MVA  dibuktikan  dari  hasil pewarnaan akar (Gambar 1) struktur vesikula dan hifa terlihat pada perakaran tanaman.
Gambar 1. A) Hifa dan B) Vesikula (perbesaran 100x).
Pengamatan  kolonisasi  FMA  pada  contoh  akar  tanaman dilakukan  dengan  teknik  pewarnaan  akar  ( root  staining ). Suatu simbiosis terjadi apabila mikoriza masuk ke dalam akar atau  melakukan  infeksi.  Proses  infeksi  dimulai  dengan perkecambahan  spora  didalam  tanah.  Hifa  yang  tumbuh melakukan penetrasi ke dalam akar dan berkembang di dalam korteks [39].
Menurut Hermawan dkk [40] infeksi yang dilakukan oleh fungi  mikoriza  lebih  banyak  terjadi  pada  akar  muda  di belakang  jaringan  meristematik.  Adanya  simbiosis  akar dengan jamur mikoriza mampu meningkatkan serapan hara, air, dan meningkatkan pertumbuhan tanaman [41].
Perlakuan  Kontrol  5  dimana  media  tanam  pasir  pantai dengan  inokulasi  pupuk  mikoriza  15  gram  pada  akhir pengamatan  minggu  ke-10  menunjukkan  persentase  infeksi akar 36,67 %. Menurut [42] kriteria efektifitas derajat infeksi MVA dengan presentase 26%-50% termasuk dalam kategori sedang.  Kondisi  tersebut  menunjukkan  mikoriza  dapat tumbuh  di  media  pasir  pantai,  namun  tidak  menunjukkan pertumbahan  yang  optimal.  Berdasakan  hasil  analisa kandungan organik pada pasir pantai tidak terukur.
Berdasarkan penelitian [43] menyatakan efisiensi penyerapan hara pada akar yang bermikoriza meningkat lebih baik  diandingkan  dengan  tanaman  tanpa  mikoriza.  Hal  ini disebabkan  oleh  pengambilan  dan  pengangkutan  hara  oleh mikoriza. Hal  ini dikarenakan  mikoriza secara efektif dapat meningkatkan penyerapan unsur hara makro (N,P, K, Ca, Mg dan  fe)  dan  unsur  mikro  (Cu,  Mn  dan  Zn).  Selain  itu  akar bermikoriza dapat menyerap unsur hara dalam bentuk terikat dan tidak tersedia untuk tanaman [44].

## IV. KESIMPULAN DAN SARAN

## A. Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian  yang  telah  diperoleh  dapat disimpulkan  bahwa  pengaruh  inokulasi  mikoriza  arbuskula pada media tanam AMB-P07 dan mikoriza tidak berpengaruh pada jumlah dan berat buah. Hal ini disebabkan bahwa pada media  tanam  kontrol  1,  kontrol  3,  dan  kontrol  4  terhadap pertumbuhan  terong  diduga  telah  tersedia  unsur  yang dibutuhkan  oleh  tanaman.  Hasil  uji  kadar  flavonoid  dan aktivitas  antioksidan  tertinggi  pada  perlakuan  media  tanam AMB-P07  dengan  inokulasi  mikoriza  25  gram.  Kadar flavonoid menunjukkan sebesar 35,41 mgEQ/100gr sedangkan  persen  inhibisi  83,60%.  Semakin  tinggi  nilai aktivitas antioksidan, maka hubungan kedua variabel tersebut menyatakan berbanding lurus.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] T.  Simarmata,  “Revitalisasi  Kesehatan  Ekosistem  Lahan  Kritis Dengan  Memanfaatkan  Pupuk  Biologis  Mikoriza  Dalam Percepatan  Pengembangan  Pertanian  Ekologis  Di  Indonesia,” VISI , vol. 15, no. 3, pp. 289–306, 2007.
[2] I. Pewista and R. Harini, “Faktor Dan Pengaruh Alih Fungsi Lahan Pertanian  Terhadap  Kondisi  Sosial  Ekonomi  Penduduk  Di Kabupaten  Bantul.  Kasus  Daerah  Perkotaan,  Pinggiran  Dan Pedesaan Tahun 2001-2010,” J. Bumi Indones. , vol. 2, no. 2, pp. 96–103, 2013.
[3] A. Muhibuddin, Spesifikasi Kandungan Nutrisi Kompos . Unwaha Press, 2018.
[4] B. Okmen, O. Sigva, M. Hasan, D. Sevgi, A. Yemenicioglu, and A. Frary, “Total Antioxidant Activity and Total Phenolic Contents in Different Turkish Eggplant (Solanum Melongena L.) Cultivars,” Int. J. Food Prop. , vol. 12, no. 3, pp. 616–624, 2009.
[5] G. Cao,  E. Sofic, and R.L.  Prior, “Antioxidant Capacity Of  Tea And Common Vegetables,” J. Agric. Food Chem , pp. 3426–3431, 1996.
[6] H.  Winarsi, Antioksidan  Alami  dan  Radikal  Bebas .  Yogyakarta: Kanisius, 2007.
[7] R. Hartoyo and D. Anwar, “Pengaruh Sistem Tanam Single Row Double Row Dan Dosis Npk Mutiara Terhadap Pertumbuhan Serta Produksi  Terong  Ungu  (Solanum  melongena  L.)  Varietas Antaboga-1,” J. Ilm. Hijau Cendekia , pp. 64 – 72, 2018.
[8] I.  R.  Sastrahidayat,  S.  Djauhari,  and  N.  Saleh, Potensi  Mikroba Sebagai Agens Hayati Bagi Pengendalian Penyakit Rebah Semai (Sclerotium rolfsii) pada Kedelai . Malang: UB Press, 2013.
[9] I.  Tauchid,  “Pengaruh  Glomus  aggregatum  yang  Diinokulasikan Pada  Vetiver  (Chrysopogon  zizanioides)  Dalam  Menurunkan Total Petroleum Hydrocarbon,” J. Sains dan Seni ITS , 2011.
[10] M. Sahetapy, “Respon Terong (Solanum melongena L.) Terhadap Perlakuan Dosis Pupuk Herbafarm,” J. Ilm. Unklab , pp. 1–7, 2012.
[11] G.  Iritani, Vegetable  Gardening:  Panduan  Praktis  Menanam Sayur di Rumah . Yogyakarta: PT. Agromedia Pustaka, 2012.
[12] P.  Akanitapichat,  K.  Phraiburg,  K.  Nuchklang,  and  S. Prompitakkul,  “Antioxidant  and  Hepatoprotective  Activities  of Five Eggplant Varieties,” Food Chem. Toxicol. , vol. 48, pp. 3017– 3021, 2010.
[13] R.  Asmah,  A.  B.  M.  Fadzelly,  M.  A.  Abdah,  N.  Eliana,  and  Y. Hafzan,  “Antioxidant  Activity,  Total  Phenolic  Content  And Cytotoxic  Activity  Of  Various  Types  Of  Eggplants,” J.  Trop. Agric. Fd. Sc , vol. 35, pp. 91– 97, 2007.
[14] A. Roskiana, Juwita, S. A. D. Ratulangi, and A. Malik, “Penetapan Kadar  Fenolik  dan  Flavonoid  Total  Ekstrak  Metanol  Buah  dan Daun Patikala (Etlingera elatior (Jack) R.M.SM),” Pharm Sci Res , vol. 2, 2015.
[15] O. R. Alara, N.  H. Abdurahmana, and O. A. Olalere, “Ethanolic Extraction  of  Flavonoids,  Phenolics,  and  Antioxidants  from Vernonia amygdalina Leaf using Two – Level Factorial Design,” J. King Saud Univ. , 2017.
[16] E. Nwanna, O. Emmanuel, Ibukun, and G. Oboh, “Inbitory Effects Of  Methanolic  Extracts  Of  Two  Eggplant  Species  From  South- Western  Nigeria  On  Starch  Hydrolysing  Enzymes  Linked  To Type-2 Diabetes,” African J. Pharm. , vol. 7, pp. 1575–1584, 2013.
[17] J.  M.  Phillips  and  D.  S.  Hayman,  “Improved  procedures  for clearing  roots  and  staining  parasitic  and  vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection.” 1970.
[18] D.  Maghfoer, Teknik  Pemupukan  Terung  Ramah  Lingkungan . Malang: UB Press, 2018.
[19] O.  Ignatius,  E.  Enodian,  S.  Raymond,  O.-I.  Osasere,  and  A.  H. Abiola,  “The  Chemistry  Of  Natural  Product:  Plant  Secondary Metabolites,” Int.  J.  Technol.  Enhanc.  Emerg.  Eng.  Res. ,  vol.  4, pp. 1–10, 2016.
[20] O.  K.  Ng’etich,  A.  N.  Niyokuri,  J.  J.  Rono,  and  J.  O.  Ogweno, “Effect of Different Rates of Nitrogen fertilizer on the Growth and Yield of Summer Squash (Cucurbita pepo cv. Diamant L.) Hybrid F1 in Rwandan High Altitude Zone,” Int. J. Agric. Crop Sci. , vol.
5, pp. 54–62, 2013.
[21] M. Yuniwati, F. Iskarima, and A. Padulemba, “Optimasi Kondisi Proses  Pembuatan  Kompos  Dari  Sampah  Organik  Dengan  Cara Fermentasi Menggunakan Em4,” J. Teknol. , vol. 2, pp. 172 – 181, 2012.
[22] D.  Pranowo,  M.  Herman,  and  Syafaruddin,  “Potensi Pengembangan Kemiri Sunan (Reutealis trisperma (Blanco) Airy Shaw) Di Lahan Terdegradasi,” Perspektif , vol. 14, no. 2, pp. 87– 101, 2015.
[23] M. Safei, A. Rahmi, and N. Jannah, “Pengaruh Jenis Dan Dosis Pupuk  Organik  Terhadap  Pertumbuhan  Dan  Hasil  Tanaman Terung  (Solanum  melongena  L.)  Varietas  Mustang  F-1,” J. Agrifor , vol. 13, no. 1, pp. 59–66, 2014.
[24] J.  Harrison  and  R.  A.  Dixon,  “Isoflavonoid  Accumulation  And Expression  Of  Defense  Gene  Transcripts  During  The Establishment Of Vesicular–Arbuscular Mycorrhizal Associations In Roots Of Medicago truncatula,” Mol. Plant Microbe Interact. , pp. 643–654, 1993.
[25] G. Larose, R. Chênvert, P. Moutoglis, S. Gagné, Y. Piché, and H. Vierheilig, “Flavonoid  Levels In Roots Of Medicago Sativa  Are Modulated  By  The  Developmental  Stage  Ofthe  Symbiosis  And The  Root  Colonizing  Arbuscular  Mycorrhizal  Fungus,” J.  Plant Physiol , vol. 159, pp. 1329–1339, 2002.
[26] R. Andayani, M. Maimunah, and L. Yovita, “Penentuan Aktivitas Antioksidan, Kadar Fenolat Total dan Likopen pada Buah Tomat (Solanum lycopersicum L),” 2008.
[27] A.  Ali  Ghasemzadeh  and  N.  Ghasemzadeh,  “Flavonoids  and phenolic  acids:  Role  and  biochemical  activity  in  plants  and human,” J. Med. Plants Res. , vol. 5, no. 31, pp. 6697–6703, Dec. 2011.
[28] Mohanna  Mollavali,  sahebali  Bolandnazar,  H.  Nazemieh,  and Fariba  Zare,  “The  effect  of  mycorrhizal  fungi  on  antioxidant activity  of  various  cultivars  of  onion  (Allium  cepa  L),” Int.  J. Biosci. , vol. 6, no. 1, pp. 66–79, Jan. 2015.
[29] B. Bargumono, S. Z. Suyanto ZA, and Y. Yusrizal, “Pertumbuhan, Hasil  Dan  Kandungan  Flavonoid  Tanaman  Ciplukan  (Physalis angulata L.) Pada Berbagai Dosis Pupuk NPK Dan Macam Pupuk Organik,” 2006.
[30] B. Deng, Y. Li, D. Xu, Q. Ye, and G. Liu, “Nitrogen availability alters  flavonoid  accumulation  in  Cyclocarya  paliurus  via  the effects on the internal carbon/nitrogen balance,” Sci. Rep. , vol. 9, no. 1, p. 2370, Dec. 2019.
[31] M.  S.  Brewer,  “Natural  Antioxidants:  Sources,  Compounds, Mechanisms of Action, and Potential Applications,” Compr. Rev.
Food Sci. Food Saf. , vol. 10, no. 4, pp. 221–247, Jul. 2011.
[32] Eveline and A. A. Nawangsih, “Variasi Rasio Sari Bit Merah (Beta vulgaris L.), Susu Skim, Dan Kultur Starter Terhadap Karakteristik Yoghurt Sari Bit Merah,” J. Sains dan Teknol. , vol. 3, 2019.
[33] Sahid,  R.  H.  Murti,  and  S.  Trisnowati,  “Hasil  dan  Mutu  Enam Galur Terung (Solanum melongena L.,” Vegetalika , vol. 3, no. 2, pp. 45–58, 2014.
[34] Adetya,  S.  Nurhatika,  and  A.  Muhibuddin,  “Pengaruh  Pupuk Mikoriza  Terhadap  Pertumbuhan  Cabai  Rawit  (Capsicum frutescens) di Tanah Pasir,” J. Sains dan Seni ITS , vol. 7, no. 2, pp. 75–79, 2019.
[35] K.  Musafa,  L.  Q.  Aini,  and  B.  Prasetya,  “Peran  Mikoriza Arbuskula  Dan  Bakteri  Pseudomonas  fluorescens  Dalam Meningkatkan Serapan P Dan Pertumbuhan Tanaman Jagung Pada Andisol,” J. Tanah dan Sumberd. Lahan ,  vol. 2, no. 2, pp. 191– 197, 2015.
[36] A.  Puspitasari,  D.  Purwani,  and  A.  Muhibuddin,  “Eksplorasi Vesicular  Aruscular  Mycorrhiza  (VAM)  Indigenous  pada  Lahan Jagung di Desa Torjun, Sampang Madura,” J. Sains dan Seni ITS , vol. 1, 2012.
[37] S.  Pulungan,  “Infeksi  Fungi  Mikoriza  Arbuskula  Pada  Akar Tanaman Tebu (Saccharum officinarum L.),” J. Biosains Unimed , vol. 1, no. 1, pp. 43–46, 2013.
[38] N.  Zou,  K.  Srivastava,  D.  Ni,  and  Q.  S.  Wu,  “Disruption  Of
Mycorrhizal Extraradical Mycelium And Changes In  Leaf Water Status And Soil Aggregate Stability In Rootbox-Grown Trifoliate Orange,” Front. Microbiol. , vol. 6, pp. 1–6, 2016.
[39] Talanca,  “Status  Cendawan  Mikoriza  Vesikular  Arbuskular (MVA)  pada  Tanaman,  Balai  Penelitian  Tanaman  Serealia, Sulawesi Selatan,” in Prosiding  Pekan  Serealia  Nasional ,  2010, pp. 353–357.
[40] Hermawan, A. Muin, and R. Suci, “Kelimpahan Fungi Mikoriza Arbuskula  (Fma)  Pada  Tegakan  Ekaliptus  (Eucalyptus  pellita) Berdasarkan  Tingkat  Kedalaman  Di  Lahan  Gambut,” J.  Hutan Lestari , vol. 3, no. 1, pp. 124 – 132, 2015.
[41] M. Miransaria, H. A. Bahramib, F. Rejalic, M. J. Malakoutib, and H.  Torabia,  “Using  Arbuscular  Mycorrhiza  To  Reduce  The Stressful  Effects  Of  Soil  Compaction  On  Corn  (Zea  mays  L.) Growth,” Soil Biol. Biochem. , vol. 39, 2007.
[42] Y.  Setiadi,  “Petunjuk  Laboratorium  Mikrobiologi  Tanah  Hutan. Pusat Antar Universitas Bioteknologi Kehutanan,” Jakarta, 1992.
[43] O. Quilambo, “Simbiosis Mikoriza Vesikular Arbuskula,” African
J. Biotechnol. , vol. 2, pp. 539–546, 2003.
[44] I.  Permanasari,  K.  Dewi,  M.  Irfan,  and  A.  Arminudin, “Peningkatan  Efisiensi  Pupuk  Fosfat  Melalui  Aplikasi  Mikoriza Pada Kedelai,” J. Agroteknologi , vol. 6, no. 2, pp. 23–30, 2016.