Sukendi., Windarti.,Putra., RM 2017 : 11 (2)

## PENINGKATAN VOLUME SEMEN DAN KUALITAS SPERMATOZOA IKAN
BETOK ( Anabas testudineus Bloch) UNTUK PEMIJAHAN BUATAN DALAM KONSERVASI SUMBERDAYA PERAIRAN

## Sukendi
Dosen Pascasarjana Ilmu Lingkungan Program Pascasarjana Universitas Riau, Pekanbaru, Jl. Pattimura No.09.Gobah, 28131. Telp 0761-23742.

## Windarti
Dosen Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Riau Kampus Bina Widya KM 12,5 Simpang Baru, Pekanbaru, 28293. Telp. 0761-63267

## Ridwan Manda Putra
Dosen Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Riau Kampus Bina Widya KM 12,5 Simpang Baru, Pekanbaru, 28293. Telp. 0761-63267
Improvement Of Certificate Volume And Quality Spermatozoa Of Betok Fish ( Anabas Testudineus Bloch) Between For Made Study In Conservation Of
Resource Resources

## ABSTRACT
This  study  aims  to  determine  the  increase  of  cement  volume  and  the  quality  of  fish spermatozoa  betok  ( Anabas  testudineus Bloch)  by  using  ovaprim  and  hCG  stimuli  for artificial spawning in the conservation of marine resources. The treatment used was P1 =  ovaprim  injection  with  dose  0.4  ml  /  kg  body  weight,  P2  =  ovaprim  injection  with dose 0.6 ml / kg body weight, P3 = injection of hCG with dose 400 IU / kg body weight, P4  =  injection  hCG  with  dose  of  800  IU  /  kg  body  weight  and  P5  =  1  ml  of physiological 0.65% / kg body weight (as control). The parameters measured were the volume  of  cement,  spermatozoa  concentration,  spermatozoa  motility  and  viability  of spermatozoa. The results showed that the best treatment was 0.6 ml ovaprim / kg body weight  injection,  0.9  ml  of  cement  volume,  spermatozoa  concentration  of  1250  x  109 cells / ml, spermatozoa viability of 88.90% and spermatozoa motility of 65.40%.
Key word : semen, spermatozoa, concentration, viability and motility

## PENDAHULUAN
Ikan  betok  ( Anabas  testudineus Bloch)  merupakan  salah  satu  dari  31  jenis  ikan ekonomis penting yang ditemukan di sepanjang perairan Sungai Kampar, Riau.  Ikan ini masih termasuk ikan liar yang hidup di perairan alam, sehingga kebutuhan masyarakat di  daerah  Propinsi  Riau  umumnya  dan  Kabupaten  Kampar  kususnya  terhadap  ikan  ini masih  diperoleh  semata-mata  dari  hasil  tangkapan  di  perairan  umum  kususnya  dari
perairan  Sungai  Kampar    yang  merupakan  salah  satu  dari  empat  sungai  terbesar  di Propinsi Riau.  Salah satu cara yang dapat dilakukan agar kelestarian ikan betok tersebut dari  perairan  alam  kususnya  dari  perairan  Sungai  Kampar,  Riau  tetap  dapat  terjaga adalah dengan melakukan konservasi  terhadap ikan tersebut.  Konservasi  terhadap ikan betok  dapat  dilakukan  melalui  usaha  budidayanya  di  alam  yang  terkontrol  sehingga nantinya kebutuhan masyarakat terhadap ikan tersebut tidak lagi semata-mata diperoleh dari  alam  tetapi  dapat  dipenuhi  melalui  usaha  budidaya  yang  dilakukan.  Namun keberhasilan usaha budidaya yang dilakukan sangat tergantung pada kualitas benih yang dibesarkan.  Untuk  mendapatkan  kualitas  benih  yang  baik  bukan  saja  tergantung  pada kualitas telur  yang diperoleh dari induk  ikan  betina tetapi  juga sangat  tergantung pada volume semen dan kualitas spermatozoa yang diperoleh dari induk ikan jantan pada saat melakukan  pemijahan  buatan.  Berdasarkan  hal  tersebut  penelitian  dengan  judul  “ Peningkatan  volume  semen  dan  kualitas  spermatozoa  ikan  betok  ( Anabas  testudineus Bloch) untuk pemijahan buatan dalam konservasi sumberdaya perairan “ ini  dilakukan.
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  peningkatan  volume  semen  dan  kualitas spermatozoa  ikan  betok  ( Anabas  testudineus Bloch)  melalui  rangsangan  ovaprim  dan hCG,  sehingga  nantinya  dapat  menghasilkan  benih  berkualitas  melalui  pemijahan buatan  sekaligus  dapat  dilakukan  budidayanya  dalam  rangka  konservasi  sumberdaya perairan.  Manfaat  dari  penelitian    ini  diharapkan  dapat  menjadi  informasi  dasar  dalam menentukan  dosis  ovaprim  dan  hCG  yang  terbaik  digunakan  pada  induk  ikan  betok jantan  dalam  meningkatkan  volume  semen  dan  kualitas  spermatozoa  yang  sangat dibutuhkan dalam melakukan pemijahan buatan.

## METODE PENELITIAN

## Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian ini dilakukan di Labortorium Pembenihan dan Pemuliaan Ikan (PPI) Jurusan Budidaya  Perairan,  Fakultas  Perikanan  dan  Kelautan  Universitas  Riau,  berlangsung selama 3 (tiga) bulan dimulai dari bulan Maret sampai dengan Juni  2011.

## Persiapan Ikan Uji
Ikan  uji  yang  digunakan  diperoleh  dari  hasil  tangkapan  di  perairan  Sungai  Kampar tepatnya  di  Desa  Lubuk  Siam,  Kecamatan  Siak  Hulu  Kabupaten  Kampar    yang selanjutnya  untuk  pematangan  dipelihara  di  bak-bak  beton  yang  ada  di  Labortorium Pembenihan dan Pemuliaan  Ikan (PPI) Jurusan  Budidaya Perairan,  Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Riau. Ikan uji dipelihara selama 2 (dua) bulan dengan pakan yang  diberikan  untuk  pematangan  adalah  pellet  udang  +  vitamin  E  sebesar  5  %  dari bobot  tubuh  sehari.  Ikan  hasil  pemeliharaan  diseleksi  dengan  kretaria  ikan-ikan  jantan yang memiliki kisaran ukuran yang sama dan telah memiliki tingkat kematangan gonad (TKG  IV)  diberi  perlakuan  rangsangan  ovaprim  dan  hCG  sesuai  dengan  dosis  yang telah ditentukan.

## Penyuntikan
Penyuntikan terhadap ikan uji dilakukan dua kali secara  intramuskular  dengan selang waktu  6  jam  (Woynarovich  dan  Horvath,  1980).  Penyuntikan  pertama  menggunakan
setengan  dari  dosis  yang  telah  ditetapkan.  Selanjutnya  pengamatan  parameter  uji dilakukan  6 jam setelah penyuntikan kedua (Sukendi, et al .,  1996).

## Pengambilan Semen
Pengambilan semen  dilakukan dengan  cara  pembedahan terhadap ikan uji yang telah diberi  perlakuan.  Testis  dicacah  kemudian  diperas  dan  semen  yang  diperoleh  disedot menggunakan  jarum  suntik  tanpa  jarum.  Selanjutnya  dilakukan  pengukuran  parameter uji yang terdiri dari volume semen, konsentrasi, motilitas dan viabilitas spermatozoa.

## Analisa Data
Perlakuan yang digunakan dalam penelitian ini terdiri dari
P1   =   penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,4 ml/kg bobot tubuh P2   =   penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,6 ml/kg bobot tubuh P3   =   penyuntikan hCG dengan dosis 400 IU/kg bobot tubuh P4   =   penyuntikan hCG dengan dosis 800 IU/kg bobot tubuh
P5  =   penyuntikan  1  ml  NaCl  fisiologis  0,65  %  /kg  bobot  tubuh  (sebagai kontrol)
Analisa data  dilakukan  dengan mengggunakan rancangan acak lengkap (RAL) dengan tiga kali ulangan untuk setiap perlakuan sehingga  didapatkan 15 unit percobaan. Model rancangan yang digunakan sebagai berikut :
Yij =  +  i +  ij
dimana :
Y ij =   Hasil pengamatan  individu yang mendapat  perlakuan ke - i dan ulangan ke- j  =   Rata-rata umum  i = Pengaruh perlakuan ke-i  ij =   Pengaruh galat perlakuan ke - i ulangan  ke - j

## Peubah Yang Diukur 1.  Volume Semen
Pengukuran volume semen dilakukan  dengan cara mengukur volume yang berhasil diperoleh dari hasil penyedotan semen menggunakan jarum suntik tanpa jarum yang telah dilakukan dari masing-masing perlakuan.

## 2.  Konsentrasi Spermatozoa
Konsentrasi  spermatozoa  ikan  uji  diukur  dengan    menggunakan    haemositometer (Toelihere,  1985).    Metode  yang  digunakan  adalah  dengan  mengisap  semen  pakai pipet  sampai  angka    0,5    dan  selanjutnya  dihisap    sedikit    udara  kedalam  pipet tersebut.  Kemudian  dihisap  air  sampai  angka  101  dan  dikocok  dengan  hati-hati. Beberapa  tetes  larutan  spermatozoa  dibuang    dari  pipet  tersebut  lalu  ujung  pipet dibersihkan  dengan  kertas  tissue.  Larutan  spermatozoa    diteteskan  ke  kamar  hitung Neubeur    dan  ditutup  dengan  kaca  penutup.  Sel-sel  spermatozoa  dihitung  menurut arah  diagonal  di  bawah    mikroskop  dengan  pembesaran    10  x  40.  Karena  setiap kamar mempunyai   16 ruangan kecil, maka   di  dalam 5 kamar terdapat  80 ruangan
kecil.  Seluruh  gelas    haemositometer  memiliki  400  ruangan  kecil  dengan  demikian volume  setiap  ruangan  kecil  adalah    0,1  mm 3 ,  pengenceran  200  kali  dan    bila    di dalam  terdapat   x  spermatozoa maka konsentrasi  spermatozoa adalah :
X  x  400/80  x  10  200  = X  x  0,01  juta spermatozoa/mm 3
= X x 10 7 spermatozoa per ml

## 3. Viabilitas Spermatozoa
Viabilitas  spermatozoa  dihitung    dengan  cara  pewarnaan  menggunakan  eosin  2  %. Pengamatan  dengan  cara  menghitung    perbandingan  spermatozoa    yang  tidak terwarnai  (hidup)  dengan  yang  terwarnai  (mati)  oleh  eosin  dan  dinyatakan    dalam persen.  Untuk  menentukan    viabilitas,  diamati  sebanyak  200  sel  spermatozoa  dari masing-masing  perlakuan    sehingga  diperoleh  nilai  viabilitas  spermatozoa  sebagai berikut :
 spermatozoa hidup Viabilitas spermatozoa =    -----------------------------  x 100 % Total spermatozoa
4.  Motilitas Spermatozoa
Motilitas  spermatozoa  diukur  bersamaan  dengan  penentuan    konsentrasi spermatozoa.  Setelah    diketahui    jumlah  total  spermatozoa    dalam  5  kamar  (80 ruangan  kecil)  pada  glas  objek  Neubauer  kemudian  dihitung  jumlah    spermatozoa yang  immotil  (pergerakan  tidak  progresif  seperti  melingkar,  mundur  atau  diam), sehingga didapatkan jumlah spermatozoa yang motil (pergerakan progresif atau aktif maju kedepan). Pengamatan spermatozoa  motil membutuhkan  waktu 5 - 10 menit. jumlah  spermatozoa  motil  =  total  spermatozoa  -  spermatozoa  immotil,  sehingga diperoleh nilai motilitas spermatozoa sebagai berikut :
 spermatozoa motil
Motilitas spermatozoa  =      -------------------------  x 100 % Total spermatozoa

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil penelitian menunjukkan bahwa perlakuan penyuntikan ovaprim dan hCG dengan dosis yang berbeda berpengaruh sangat nyata (P < 0,01) terhadap nilai volume semen, viabilitas    dan  motilitas  spermatozoa  dan  berpengaruh  nyata                          (P  <  0,05) terhadap  nilai  konsentrasi  spermatozoa.    Nilai  volume  semen,  konsentrasi spermatozoa,  viabilitas  spermatozoa  dan  motilitas  spermatozoa  ikan  betok  selama penelitian disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1.  Nilai  volume  semen,  konsentrasi  spermatozoa,  viabilitas  spermatozoa  dan motilitas  spermatozoa  ikan  betok  dari  masing-masing  perlakuan  selama penelitian Perlakuan Volume semen (ml) Konsentrasi spermatozoa (x 10 9 sel /ml) Viabilitas spermatozoa (%) Motilitas spermatozoa P1 0,06 1033,3 80,3 60,97 P2 0,09 1250 88,9 65,40 P3 0,07 1066,7 85 62,03 P4 0,04 916,7 79,8 53,77 P5 0,02 550 50,5 42,23
Keterangan :
P1   =   penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,4 ml/kg bobot tubuh P2   =   penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,6 ml/kg bobot tubuh P3   =   penyuntikan hCG dengan dosis 400 IU/kg bobot tubuh P4   =   penyuntikan hCG dengan dosis 800 IU/kg bobot tubuh P5  =   penyuntikan  1  ml  NaCl  fisiologis  0,65  %  /kg  bobot  tubuh  (sebagai kontrol)

## 1. Volume Semen
Hasil  pengamatan  terhadap  nilai  volume  semen  ikan  betok  dari  masing-masing perlakuan dapat dilihat pada Gambar 1. Nilai volume semen tertinggi  diperoleh  pada perlakuan P2 (penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,6 ml/kg bobot tubuh) sebesar  0,09 ml  diikuti  oleh  P3  (penyuntikan  hCG  dengan  dosis  400  IU/kg  bobot  tubuh)  sebesar 0,07 ml,  P1 (penyuntikan ovaprim dengan dosis  0,4 ml/kg bobot  tubuh)  sebesar 0,06 ml,  P4  (penyuntikan  hCG  dengan  dosis  800  IU/kg  bobot  tubuh)  sebesar  0,04  ml  dan P5 (penyuntikan 1 ml NaCl fisiologis 0,65 % /kg bobot tubuh (sebagai kontrol) sebesar 0,02 ml.
Gambar.  1.  Histogram volume semen ikan betok dari masing-masing perlakuan
Tingginya  nilai  volume  semen  diperoleh  pada  perlakuan  P2  (penyuntikan  ovaprim dengan  dosis  0,6  ml/kg  bobot  tubuh)  ini  disebabkan  karena  dosis  ovaprim  yang disuntikkan  berperan  merangsang  testis  untuk  memproduksi  plasma  semen,  sehingga volume  semen  yang  dihasilkan  juga  akan  turut  meningkat.  Volume  semen  yang dihasilkan  lebih  kecil  bila  dibandingkan  dengan  jenis  ikan  air  tawar  lainnya,  hal  ini karena  sesuai  dengan  ukuran  tubuh  ikan  betok  yang  kecil  sehingga  volume  yang dihasilkan juga lebih sedikit.    Beberapa hasil  penelitian sebelumnya  yang mengamati pengaruh  penyuntikan  ovaprim  terhadap  volume  semen  telah  berhasil  dilakukan terhadap  beberapa  jenis  ikan  air  tawar,  diantaranya    pada  motan  ( Thynnichtthys thynnoides Blkr)  dengan  penyuntikan  75  %  ovaprim  +  25  %    PGF2  α    (0,525  ml ovaprim + 750 μg PGF2 α/kg bobot tubuh menghasilkan 1,20 ml (Sukendi 2012),  ikan kapiek ( Puntius schwanefeldi Blkr) dengan penyuntikan 50 % ovaprim + 50 %  PGF2 α    (0,250  ml  ovaprim  +  1250  μg  PGF2  α/kg  bobot  tubuh  menghasilkan  2,03  ml
0.06 0.09 0.07 0.04 0.02 0.00 0.02 0.04 0.06 0.08 0.10 P1 P2 P3 P4 P5 Volu m e se m en ika n b eto k (m l) Perlakuan
(Sukendi, 2012),  ikan ingir-ingir ( Mystus negricep CV) dengan penyuntikan ovaprim 0,4 ml/kg bobot tubuh menghasilkan volume semen sebanyak 0,92 ml (Sukendi, Putra dan  Nur”Asiah,  2014)  dan  ikan  pawas    ( Osteochilus  hasselti )  dengan  penyuntikan ovaprim  0,5  ml/kg  bobot  tubuh  menghasilkan  volume  semen  sebanyak  0,63  ml (Sukendi,  Thamrin  dan  Putra,  2015).    Berdasarkan  hasil  uji  lanjut  dengan menggunakan  uji  Newman  Keuls  menunjukkan  bahwa  antara  perlakuan    P5  tidak berbeda  nyata  (P>0,05)  dengan  P4  namun  berbeda  nyata  (P<0,05)  dengan  P1  dan berbeda sangat nyata (P<0,01)  dengan P3 dan P2.

## 2. Konsentrasi Spermatozoa
Hasil  pengamatan  terhadap  nilai  konsentrasi  spermatozoa  ikan  betok  dari  masing- masing  perlakuan  dapat  dilihat  pada  Gambar  2.  Nilai  konsentrasi  spermatozoa terendah  diperoleh  pada perlakuan P2 (penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,6 ml/kg bobot  tubuh) sebesar 550,00 x 10 9 sel/ml.  diikuti oleh P3 (penyuntikan  hCG  dengan dosis 400 IU/kg bobot tubuh) sebesar 916,66 x 10 9 sel/ml,  P1 (penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,4 ml/kg bobot tubuh) sebesar 1033,33 x 10 9 sel/ml,  P4 (penyuntikan hCG  dengan  dosis  800  IU/kg  bobot  tubuh)  sebesar  1066,66  x  10 9 sel/  ml.  dan    P5 (penyuntikan  1  ml  NaCl  fisiologis  0,65  %  /kg  bobot  tubuh  (sebagai  kontrol)  sebesar 1250,00 x x 10 9 sel/ml.
Nilai konsentrasi spermatozoa selalu berbanding  terbalik dengan nilai volume semen, nilai  viabilitas  spermatozoa  dan  nilai  motilitas  spermatozoa.  Dengan  semakin tingginya  volume  semen  akibat  rangsangan  hormonal  yang  diberikan  maka  yang bertambah  adalah  plasma  semen,  sedangkan  jumlah  sel  spermatozoa  yang  ada  selalu tetap  sehingga    konsentrasi  spermatozoa  setiap  ml  akan  semakin  berkurang.  Dalam melakukan  fertilisasi  pada  ikan  nilai  konsentrasi  spermatozoa  tidak  terlalu dipentingkan  karena dalam  pembuahan  yang terjadi  setiap satu  sel  telur  hanya dapat dibuahi oleh satu sel spermatozoa yang sering disebut dengan istilah polispermik. Oleh sebab  dalam  proses  fertilisasi  pada  ikan  yang  dibutuhkan  adalah  nilai  motilitas  dan viabilitas  spermatozoa  harus  tinggi.    Beberapa  hasil  penelitian  penggunaan  hormon terhadap konsentrasi spermatozoa ikan air tawar antara lain ikan motan ( Thynnichthys thynnoides Blkr)  dengan  penyuntikan  75  %  ovaprim  +  25  %    PGF2  α    (0,525  ml ovaprim  +  750  μg  PGF2  α/kg  bobot  tubuh  menghasilkan  konsentrasi  spermatozoa sebesar 24,54 x 10 9 sel/ml (Sukendi, Putra dan Yurisman, 2009), ikan kapiek ( Puntius schwanefeldi Blkr)  dengan  penyuntikan  50  %  ovaprim  +  50  %    PGF2  α    (0,250  ml ovaprim  +  1250  μg  PGF2  α/kg  bobot  tubuh  menghasilkan  konsentrasi  spermatozoa sebesar  24,54  x  10 9 sel/ml  (Sukendi,  2012)  dan  ikan  pawas  ( Osteochilus  hasselti ) dengan  penyuntikan  0,50  ml  ovaprim/kg  bobot  tubuh  menghasilkan  konsentrasi spermatozoa sebesar 14,04 x 10 9 sel/ml (Sukendi, Thamrin dan Putra, 2015).
80.3 88.9 85 79.8 50.5 0.0 20.0 40.0 60.0 80.0 100.0 P1 P2 P3 P4 P5 Vi ab ilitas s p erm at oz oa ikan b eto k (% ) Perlakuan
1033.3 1250 1066.7 916.7 550 0.0 500.0 1000.0 1500.0 P1 P2 P3 P4 P5 K on se n tras i s p erm to zo a (x 10 7 s el/m l) Perlakuan

## Gambar.  2.  Histogram  konsentrasi  spermatozoa  ikan  betok  dari  masing-masing perlakuan

## 3. Viabilitas Spermatozoa
Hasil pengamatan terhadap nilai viabilitas spermatozoa ikan betok dari masing-masing perlakuan  dapat  dilihat  pada  Gambar  3.  Nilai  viabilitas  spermatozoa    tertinggi diperoleh    pada  perlakuan  P2  (penyuntikan  ovaprim  dengan  dosis  0,6  ml/kg  bobot tubuh)  sebesar  88,90  %    diikuti  oleh  P3  (penyuntikan  hCG  dengan  dosis  400  IU/kg bobot tubuh) sebesar 85,00 %   P1 (penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,4 ml/kg bobot tubuh)  sebesar  80,3  %  dan    P4  (penyuntikan  hCG  dengan  dosis  800  IU/kg  bobot tubuh)  sebesar  79,8  %  dan  P5  (penyuntikan  1  ml  NaCl  fisiologis  0,65  %  /kg  bobot tubuh,  sebagai  kontrol)  sebesar  50,5  %.  Pada  perlakuan  P2  (penyuntikan  ovaprim dengan  dosis  0,6  ml/kg  bobot  tubuh)  merupakan  perlakuan  yang  tertinggi  untuk menghasilkan  nilai  viabilitas  spermatozoa  membuktikan  bahwa  pada  perlakuan tersebut  spermatozoa  memperoleh  sumber  energi  yang oftimal  dari cairan plasma semen    serta  asam  laktat    yang    dihasilkan    dalam  poses    metabolisme    dapat dinetralisir  oleh zat organik yang terdapat dalam  cairan plasma semen sehingga nilai viabilitas spermatozoa juga akan semakin tinggi.
Gambar.  3.  Histogram  viabilitas  spermatozoa  ikan  betok  dari  masing-masing perlakuan
Beberapa    hasil  penelitian  yang  telah  dilakukan  tentang  penggunaan  ovaprim  untuk meningkakan  viabilitas  spermatozoa  antara  lain  Sukendi,  Putra  dan  Yurisman  (2010) terhadap  ikan  motan  ( Thynnichtthys  thynnoides Blkr)  dengan  penyuntikan  75  % ovaprim  +  25  %    PGF2  α    (0,525  ml  ovaprim  +  750  μg  PGF2  α/kg  bobot  tubuh menghasilkan  viabilitas  spermatozoa  sebesar  88,98  %,  Sukendi  (2012)  terhadap  ikan kapiek ( Puntius schwanefeldi Blkr) dengan penyuntikan 50 % ovaprim + 50 %  PGF2 α    (0,250  ml  ovaprim  +  1250  μg  PGF2  α/kg  bobot  tubuh  menghasilkan  viabilitas spermatozoa sebesar 91,67 %    dan Sukendi,  Thamrin dan Putra (2015) terhadap ikan pawas  ( Osteochilus  hasselti )  dengan  penyuntikan  0,5  ml  ovaprim/kg  bobot  tubuh menghasilkan  viabilitas  spermatozoa  sebesar  86,54  %.  Berdasarka  hasil  uji  lanjut dengan menggunakan uji Nerwmna Keuls diperoleh antara perlakuan P5 berbeda nyata (P<0,05) dengan P4 dan P1 dan berbeda sangat nyata (P<0,01) dengan P3 dan P2.

## 4. Motilitas Spermatozoa
Hasil pengamatan terhadap nilai motilitas spermatozoa ikan betok dari masing-masing perlakuan  dapat  dilihat  pada  Gambar  4.  Nilai  motilitas    spermatozoa    tertinggi diperoleh    pada  perlakuan  P2  (penyuntikan  ovaprim  dengan  dosis  0,6  ml/kg  bobot tubuh)  sebesar  65,40  %    diikuti  oleh  P3  (penyuntikan  hCG  dengan  dosis  400  IU/kg bobot tubuh) sebesar 62,03 %, P1 (penyuntikan ovaprim dengan dosis 0,4 ml/kg bobot tubuh)  sebesar  60,97  %  dan  P4  (penyuntikan  hCG  dengan  dosis  800  IU/kg  bobot tubuh)  sebesar  53,77  %  dan  P5  (penyuntikan  1  ml  NaCl  fisiologis  0,65  %  /kg  bobot tubuh, sebagai kontrol) sebesar 42,23 %.  Berdasarkan uji lanjut dengan menggunakan uji  Newman  Keuls  menunjukkan  bahwa  antara  perlakuan  P5  berbeda  nyata  (P<0,05) dengan  P4  dan  berbeda  sangat  nyata  (P  <  0,01)  dengan  P1,  P3,  dan  P2.  Bila  dilihat hubungan  regresi  antara  parameter  yang  diukur  akibat  perlakuan  hormonal  yang diberikan pada induk ikan betok jantan dapat dilihat pada Gambar 5.
Gambar.  4.  Histogram  motilitas  spermatozoa  ikan  betok  dari  masing-masing perlakuan 60.97 65.40 62.033 53.77 42.23 0.00 10.00 20.00 30.00 40.00 50.00 60.00 70.00 P1 P2 P3 P4 P5 Mo tili tas Sp er m ato zo a ( %) Perlakuan
y = 0.0016x - 0.0634 R² = 0.7654 0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0 50 100 Vo lu m e sem en ( m l) Viabilitas spermatozoa  (%) y = -13.349x + 1989.9 R² = 0.6098 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 0 50 100 Ko n sen tr asi sp er m ato zo a (x 10 7 s el/m l) Viabilitas spermatozoa (%) y = 1.5747x - 12.667 R² = 0.9103 0 20 40 60 80 100 0 20 40 60 80 Viab ilit as sp er m ato zo a (%) Motilitas spermatozoa (%) y = 0.0028x - 0.1038 R² = 0.9188 0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0 20 40 60 80 Vo lu m e sem en ( m l) Motilitas spermatozoa (%) (a) (b) (c) (d) (e)
(f)
Gambar 5.  Hubungan  antara  volume  semen  dengan  konsentrasi  spermatozoa  (a),
viabilitas  spermatozoa  (b),  motilitas  spermatozoa  (c),  hubungan  antara konsentrasi  spermatozoa  dengan  viabilitas  spermatozoa  (d),  motilitas spermatozoa  (e),  hubungan  antara  viabilitas  spermatozoa  dengan motilitasspermatozoa.
y = -04x + 0.1499 R² = 0.8815 0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12 0 500 1000 1500 Vo lu m e sem en ( m l) Konsentrasi spermatozoa (x 10 7 sel/ml) y = -23.51x + 2300.6 R² = 0.6943 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 0 50 100 Ko n sen trasi s p er m ato zo a (x 10 7 s el/m l) Motilitas spermatozoa (%)

## KESIMPULAN
Perlakuan  hormonal  yang  terbaik  untuk  meningkatkan    volume  semen  dan  kualitas spermatozoa    induk  ikan  betok  jantan    adalah    0,6  ml  ovaprim/kg  bobot  tubuh, menghasilkan volume semen sebesar 0,9 ml, konsentrasi spermatozoa  sebesar  1250 x 10 9 sel/ml,  viabilitas  spermatozoa sebesar  88,90 %  dan motilitas spermatozoa sebesar  65,40 %.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  mengucapkan  puji  syukur  kehadirat  Allah  SWT  atas  rahmat  dan  karunia  Nya sehingga penelitian ini terlaksana dengan baik.  Demikian pula semua pihak yang telah membantu penulis menyelesaikan penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Sukendi.  B.  Purwantara,  S.  Sikar  dan  A.  Hardjamulia.  1996.  Pengaruh  kombinasi penyuntikan ovaprim dan prostaglandin   F 2  terhadap daya rangsang  ovulasi dan  kualitas    telur  ikan  lele  dumbo  ( Clarias  gariepinus Burcheel).  Terubuk XXII, 65: 50 –60.
Sukendi,  R.M.  Putra  dan  Yurisman.  2009.  Pengembangan  teknologi  pembenihan  dan budidaya  ikan  motan  ( Thynnicthys  thynnoides Bkr)  dalam  rangka  menjaga kelestarian dari alam. Universitas Riau Pekanbaru
Sukendi,  R.  M.  Putra  dan  Yurisman.  2010a.  The  effects  density  toward  growth  and survival  rate  of  motan  ( thynnicthys  thynnoides Blkr).  Teknobiologi,  Jurnal Ilmiah Sains Terapan I, 1 : 29 -35.
Sukendi.  2012.  Pengaruh  kombinasi  penyuntikan  ovaprim  dan    prostaglandin    F 2  terhadap  daya  rangsang  ovulasi  dan  kualitas  telur  ikan  motan  ( thynnicthys thynnoides Blkr).  Berkala Perikanan Terubuk XXXX, 1 : 13 – 21. Sukendi,  R.  M.  Putra  dan  Nur’Asiah.  2014.  Peningkatan  daya  rangsang  ovulasi  dan mutu  telur  serta  volumen  semen  ikan  senggaringan  ( Mystus  nigriceps CV) untuk kebutuhan  pemijahan buatan dalam produksi benih. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Riau
Sukendi,  Thamrin  dan  R.  M.  Putra.  2015a.  Teknologi  domestikasi  dan  pematangan gonad  ikan  pawas  ( Osteochilus  hasselti CV)  dari  perairan  Sungai  Kampar, Riau. Dinamika Lingkungan II, 2 : 108 – 120.
Sukendi,  Thamrin  dan  R.  M.  Putra.  2015b.  Teknologi  pembenihan  dan  budidaya  ikan pawas ( Osteochilus hasselti CV) sebagai salah satu ikan ekonomis penting dari perairan Sungai Kampar, Riau. Universitas Riau Pekanbaru.
Toelihere , M. R. 1985. Inseminasi Buatan pada Ternak. Angkasa, Bandung. Waynorovich dan Horvath, 1980. The Artificial Propagation of Warm Water Fin Fishes.
A manual for Extention. FAO Fish Tech Pap (201) :183