## STUDI IDENTIFIKASI DAN PREVALENSI ENDOPARASIT PADA SALURAN PENCERNAAN
IKAN KERAPU TIKUS ( Cromileptes altivelis ) DI KERAMBA JARING APUNG UNIT PENGELOLA BUDIDAYA LAUT SITUBONDO, JAWA TIMUR
PREVALENCE STUDY AND IDENTIFICATION OF ENDOPARASITES ON HUMPBACK GROUPER GASTROINTESTINAL ( Cromileptes altivelis ) IN FLOATING NET CAGE MARINE CULTURE MANAGEMENT UNIT SITUBONDO, EAST JAVA
Mohammad Faizal Ulkhaq, Kismiyati dan Rahayu Kusdarwati
Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Kampus C Mulyorejo - Surabaya, 60115 Telp. 031-5911451

## Abstract
Humpback  grouper  ( Cromileptes  altivelis )  or  also  known  as  polkadot  grouper  is  one  of  the excellent  fish  commodities  in  Indonesia  which  has  trading  value  reached  $  90-150/kg.  As  a  consumed fish, humpback grouper  are  needed  for  beverage  at luxuries  restaurant and hotel  in the world.  As  major export commodities in Indonesia, since the 1990's   the techniques of grouper cultivation in float net rats are  enhanced  to  fulfill  international  market  demand.  Humpback  grouper  fish  cultivation  techniques  in float net  cages  cannot be  separated  from  the problems  in any  cultivate activities, one of the causes  is a disease and one of the diseases that rushed humpback grouper is parasite. The disadvantages that caused by the parasite is fish’ weight loss.
The purpose of this  study  is to determine the types of endoparasites that attacked the digestive system of humpback grouper ( Cromileptes altivelis ) in float net cages and also to discuss the prevalences of endoparasites that attack the digestive of humpback grouper ( Cromileptes altivelis ) in float net cages. The method of this research is descriptive. The sampling was done in once for 60 fishes with the length range of fish is around 15-20 cm and 4 months old from the float net. The number of each fishes samples  that  were  taken  5-10%  from  the  total  of  population,  where  the  number  of  humpback  grouper populations  in  each  raft  float  net  are  200  fishes.  The  main  parameters  that observed  in  this  study  were endoparasites  identification  species  that  attack  the  digestive  system  of  humpback  grouper  ( Cromileptes altivelis ) in float net cages and the prevalence rates for each endoparasites. The supporting parameters in this  study  were  the  water  quality  in  float  net  cages  which  includes  temperature,  pH  and  salinity  are measured during the sample taken.
The  results  showed  that  60  samples  taken  from  four  float  nets  6  fishes  were  positive  infected endoparasitic  of  trematodes  and  nematodes,  besides  4  fishes  are  positive  infected  worms Echinostoma which  belong to the class of Trematodes and 2 fishes infected worms Camallanus carangis that belongs to  the  class  Nematoda.  The  prevalence  values  for  each  of  the  worm  are  6.67%  for Echinostoma and 3.33% for Camallanus carangis . The research concern the identification and prevalence of endoparasites in Humpback grouper at hatchery is needed to early finding out the attack of endoparasites and to break the flow of  endoparasitic spreading.
Keywords : Identification, Endoparasites, Cromileptes altivelis , Floating Net Cage
Pendahuluan Ikan kerapu tikus ( Cromileptes altivelis )  atau  disebut  juga  ikan  kerapu  bebek merupakan  salah  satu  primadona  komoditas perikanan di Indonesia  yang  memiliki  nilai  jual mencapai  harga  US  $  90-150/kg  (Melianawati dkk.,  2010).  Sebagai  ikan  konsumsi,  ikan kerapu tikus banyak dibutuhkan untuk hidangan restoran  dan  hotel  mewah  di  dunia.  (Zulkifli dkk., 2000). Sebagai komoditas ekspor utama di Indonesia, sejak tahun 1990-an mulai dikembangkan  teknik  budidaya  ikan  kerapu tikus  dalam  karamba  jaring  apung  untuk
memenuhi  permintaan  pasar  internasional  yang semakin  meningkat (Asaad dkk., 2010). Teknik budidaya  ikan  kerapu  tikus  di  karamba  jaring apung  tidak  dapat  terlepas  dari  masalah  umum dalam  setiap  kegiatan  budidaya,  salah  satunya adalah  masalah  penyakit  dan  penyakit  yang menyerang  ikan  kerapu  tikus,  salah  satunya disebabkan oleh parasit.
Parasit  merupakan  organisme  yang hidup  pada  atau  di  dalam  organisme  lain  dan mengambil  makanan  dari  organisme  yang ditumpanginya untuk berkembang biak (Subekti dan  Mahasri,  2010).  Berdasarkan  habitatnya,
parasit  dalam  tubuh  ikan  dibagi  menjadi  dua yaitu  ektoparasit  (parasit  yang  menyerang bagian  luar  tubuh  ikan,  misalnya  pada  insang, sirip  dan  kulit),  dan  endoparasit  (parasit  yang menyerang  bagian  dalam  tubuh  ikan,  misalnya usus,  ginjal  dan  hati)  (Balai  Karantina  Ikan Batam, 2007).
Keberadaan endoparasit dapat menyebabkan kematian pada populasi inang dan konsekuensinya  dapat  menyebabkan  kerugian besar bagi industri perikanan. Infeksi
endoparasit  dapat  menyebabkan  dampak  yang dapat  merugikan  secara  ekonomi,  yaitu  ikan kehilangan berat badan, penolakan oleh konsumen  karena  perubahan  patologi  pada inang, penurunan fekunditas ikan dan penurunan  jumlah  dalam  penetasan  ikan  dan larva (Anshary, 2008).
Perkembangan endoparasit dalam tubuh  ikan  dipengaruhi  oleh  beberapa  faktor lingkungan,  diantaranya  suhu  dan  kandungan bahan  kimia  suatu  perairan  (Hassan,  2008). Selain  itu,  adanya  organisme  invertebrata  yang hidup  di  sekitar  karamba  jaring  apung  juga menjadi  faktor  penyebaran  endoparasit  pada ikan,  karena  organisme  tersebut  dapat  berperan sebagai  inang  perantara  dari  beberapa  spesies endoparasit (Ruckert et al ., 2009).
Salah  satu  kerugian  yang  ditimbulkan oleh  serangan  parasit  adalah  penurunan  berat badan  ikan  yang  berhubungan  erat  dengan adanya  endoparasit  pada  saluran  pencernaan ikan sehingga ikan mengalami penurunan nafsu makan.  Untuk  itu,  perlu  dilakukan  penelitian untuk  mengetahui  jenis  endoparasit  yang teridentifikasi  pada  saluran  pencernaan  ikan kerapu  tikus  dan  tingkat  prevalensinya  yang digunakan  sebagai  data  acuan  untuk  memutus alur distribusi dan penyebaran endoparasit pada ikan kerapu tikus ( Cromileptes altivelis ).

## Metodologi
Tempat dan Waktu Pelaksanaan
Pengambilan  sampel  ikan  kerapu  tikus dilaksanakan  di  Karamba  Jaring  Apung,  Unit Pengelola Budidaya Laut, Situbondo; Pembedahan sampel ikan kerapu tikus dilakukan  di  Balai  Budidaya  Air  Payau, Situbondo;  Pemeriksaan  sampel  ikan  kerapu tikus  dan  identifikasi  endoparasit  dilakukan  di Laboratorium  Pendidikan  Fakultas  Perikanan dan  Kelautan  Universitas  Airlangga,  Surabaya; dan  Pewarnaan  endoparasit  dilakukan  di Laboratorium Parasitologi, Fakultas Kedokteran Hewan  Universitas  Airlangga,  Surabaya  pada tanggal 16 Januari-13 Februari 2012.
Materi Penelitian
Peralatan untuk pengambilan sampel.
Peralatan yang digunakan untuk mengambil  sampel  yaitu  serok,  seser,  ember plastik, baskom, kantong plastik. Peralatan untuk identifikasi endoparasit Peralatan yang digunakan untuk proses identifikasi  endoparasit  yaitu  mikroskop,  luv, pisau  bedah  ( scalpel ),  gunting  bedah,  pinset, object glass, cover glass , kain kasa, pipet, mesin sentrifuge ,  dan  tabung sentrifuge .  Peralatan untuk  pengukuran  kualitas  air  meliputi:  pH paper untuk  pengukuran  pH,  refraktometer untuk  pengukuran  salinitas,  dan  termometer untuk pengukuran suhu.

## Bahan Penelitian
Bahan  yang  diperlukan  untuk  proses identifikasi endoparasit adalah ikan kerapu tikus sebanyak 60 ekor dengan ukuran panjang 15-20 cm dengan umur empat bulan yang diambil dari empat petakan karamba jaring apung milik Unit Pengelola  Budidaya  Laut,  Situbondo.  Bahan lain  yang  diperlukan  untuk  proses  identifikasi dan  pewarnaan  yaitu  larutan  NaCl  jenuh, alkohol  gliserin  5%,  NaCl  fisiologis,  alkohol 70%,  HCl,  NaHCO 3 ,  alkohol  85%,  alkohol 95%, larutan Hung’s I dan larutan Hung’s II. Penelitian  ini  menggunakan  metode survey melalui pengambilan sampel pada lokasi secara  langsung  untuk  mengidentifikasi  jenis endoparasit pada ikan kerapu tikus ( Cromileptes altivelis ).  Lokasi  pengambilan  sampel  ikan ditentukan  dengan  cara  sengaja  atau  dengan metode purposive  sampling (Bunga,  2008). Metode  pengambilan  sampel  dilakukan  secara acak  ( random  sampling )  terhadap  ikan  dari karamba  jaring  apung  di  Unit  Pengelola Budidaya Laut, Situbondo.
a. Pengambilan sampel
Pengambilan  sampel  dilakukan  sekali sebanyak 60 ekor dengan kisaran panjang tubuh ikan antara 15–20 cm dengan umur 4 bulan dari empat  petakan  karamba  jaring  apung  dengan ukuran  3x3x3  m.  Perhitungan  jumlah  sampel yang  diambil  mengacu  pada  Stasiun  Karantina Ikan  Kelas  I  Hang  Nadim  Batam  (2010)  yaitu jumlah  masing-masing  sampel  ikan  yang diambil  sebesar  5-10%  dari  jumlah  total populasi  ikan,  dimana  jumlah  populasi  ikan kerapu  tikus  di  setiap  rakit  karamba  jaring apung  masing-masing  200  ekor.  Sampel dimasukkan  ke  dalam  kantong  plastik  yang telah diisi air dan diberi oksigen lalu dibawa ke Laboratorium  Kesehatan  Lingkungan  Balai Budidaya  Air  Payau  Situbondo,  kemudian ditampung dalam akuarium dan diaerasi.
b. Pemeriksaan Sampel dan Identifikasi Parasit
Sampel  diambil  satu  persatu  dari akuarium  lalu  diletakkan  di  atas  nampan, mematikan  saraf  otaknya  dengan  menusukkan jarum  pada  kepala  ikan  kemudian  diukur panjangnya.  Bagian  anal  ikan  dibedah  dengan gunting  mengarah  ke  anterior  tubuh  sampai pada  bagian  sirip  ventral,  kemudian  digunting ke  arah  dorsal  ikan  sampai  pada  bagian  gurat sisi  lalu  digunting  mengarah  pada  bagian  anal ikan.  Saluran  pencernaan  diambil  kemudian dimasukkan  ke  dalam  pot  plastik  yang  telah berisi  alkohol  70%  dan  dimasukkan  dalam kotak sterofoam .
Identifikasi endoparasit dilakukan dengan  memeriksa  sampel  dalam  pot  plastik satu-persatu  dengan  cara  membuka  usus  dan mengamati  keadaan  mukosa  usus.  Feses dikeluarkan  dan  ditampung  dalam object  glass atau  cawan  petri  ditetesi  air  kemudian  diamati di  bawah  mikroskop  dengan  pembesaran  100x dan 400x (Stasiun Karantina Ikan Kelas I Hang Nadim  Batam,  2010).  Identifikasi  mengacu pada Souslby, (1986), Noble and Noble, (1989), Levine,  (1989)  untuk  cacing Echinostoma dan Rigby et  al, (1998),  dan  Moravec et  al ,  (2006) untuk cacing Camallanus carangis .
Apabila terbukti positif, sampel disendirikan, kemudian endoparasit diambil dan dilakukan pewarnaan, sedangkan apabila terbukti negatif, pemeriksaan sampel dilanjutkan  untuk  memeriksa  telur  cacing dengan  metode  sedimentasi  dan  pengapungan.
Setelah selesai dilakukan pewarnaan, endoparasit diidentifikasi dan didokumentasikan. c. Pewarnaan Endoparasit Pewarnaan  endoparasit  menggunakan
metode Semichen-Acetic  Carmine yang mengacu  pada  Kuhlmann  (2006),  yaitu  dengan cara:  Cacing  dicuci  dengan  larutan  PZ  lalu difiksir  diantara  2 object  glass dan  ikat  kedua ujungnya dengan benang kemudian dimasukkan dalam  alkohol  gliserin  5%  selama  24  jam. Setelah  itu,  cacing  dimasukkan  dalam  alkohol 70%  selama  5  menit,  kemudian  cacing dipindahkan  dalam  larutan  carmine  yang  sudah diencerkan  dengan  alkohol  70%  dengan perbandingan  1:2,  dibiarkan  selama  8  jam. Cacing dilepas dari object glass dan dipindahkan  dalam  larutan  alkohol  asam (alkohol  70%  +  HCl),  selama  2  menit,  larutan alkohol  basa  selama  20  menit  (alkohol  70%  + NaHCO 3 ), kemudian dilakukan dehidrasi bertingkat dengan alkohol 70% selama 5 menit, alkohol  85%  selama  5  menit  dan  alkohol  95% selama 5 menit. Selanjutnya, dilakukan mounting dalam  larutan  Hung’s  I  selama  20 menit,  kemudian  diletakkan  pada object  glass
yang bersih, larutan Hung’s II diteteskan di atas cacing tersebut, kemudian ditutup dengan cover glass .
d. Pemeriksaan telur cacing Menurut Soedarto (2008), pemeriksaan telur cacing dilakukan dengan metode konsentrasi yang dibagi menjadi dua, yaitu :
1. Metode Sedimentasi
Cara  kerja  dalam  metode  pemusingan sederhana  yaitu  :  Sejumlah  feses  dicampur dengan  air  sebanyak  10x  volume  feses  lalu diaduk  sampai  tercampur.  Campuran  feses disaring  dengan  2  lapis  kain  kasa,  lalu dimasukkan ke dalam tabung pemusing ( centrifuge  tube )  dan  dipusingkan  ( centrifuge ) selama  1-2  menit  dengan  kecepatan  1500-3000 rpm. Setelah itu, larutan permukaan
(supernatan)  dibuang  dan  diganti  dengan  air, lalu  diaduk  sampai  tercampur  dan  dipusingkan ( centrifuge )  kembali  dengan  kecepatan  1500- 3000 rpm selama 1-2 menit. Larutan permukaan (supernatan)  dibuang  dan  endapan  diperiksa  di bawah  mikroskop  dengan  perbesaran  100x  dan 400x.
2. Metode Pengapungan
Metode  ini  dilakukan  secara  langsung dengan  mencampur  feses  dengan  larutan pengapung. Larutan pengapung yang digunakan adalah  larutan  jenuh  NaCl.  Cara  kerja  dalam metode  ini  yaitu:  sejumlah  feses  dicampur dengan  air  sebanyak  10x  volume  feses  lalu diaduk  sampai  tercampur.  Campuran  feses disaring  dengan  2  lapis  kain  kasa,  lalu dimasukkan ke dalam tabung pemusing ( centrifuge  tube )  dan  dipusingkan  ( centrifuge ) selama  1-2  menit  dengan  kecepatan  1500-3000 rpm. Setelah itu, larutan permukaan (supernatan)  dibuang  dan  diganti  dengan  air, lalu  diaduk  sampai  tercampur  dan  dipusingkan ( centrifuge )  kembali  dengan  kecepatan  1500- 3000 rpm selama 1-2 menit. Larutan permukaan (supernatan)  dibuang  dan  endapan  dicampur dengan  larutan  NaCl  jenuh  lalu  diaduk  sampai tercampur dan dipusingkan ( centrifuge ) kembali dengan  kecepatan  1500  rpm  selama  1-2  menit. Hasil  pemusingan  ditambahkan  larutan  jenuh NaCl  hingga  permukaan  larutan  mendekati mulut tabung lalu ditutup dengan gelas penutup ( cover  glass )  pada  mulut  tabung  dan  ditunggu selama  5  menit. Cover  glass diambil  dan diletakkan  diatas object  glass kemudian diperiksa dibawah mikroskop dengan perbesaran 100x dan 400x.
Parameter  yang  utama  yang  diamati dalam  penelitian  ini  adalah  jenis  endoparasit yang  menyerang  saluran  pencernaan  ikan kerapu  tikus  ( Cromileptes  altivelis )  di  karamba jaring apung dan tingkat prevalensi endoparasit.
Prevalensi  serangan endoparasit dihitung sesuai dengan Bush et  al (1997) dalam Bunga, (2008) dengan rumus sebagai berikut:
Prevalensi = N x 100%
n Dimana : Prevalensi  :  Persentase  ikan  yang  terserang penyakit (%) N :  Jumlah  sampel  ikan  (inang)  yang terinfeksi parasit (ekor)
n  :  Jumlah  sampel  ikan  (inang)  yang  diamati (ekor)
Sedangkan parameter penunjang dalam penelitian  ini  yaitu  nilai  kualitas  air  pada karamba  jaring  apung  yang  meliputi  suhu,  pH dan  salinitas  yang  diukur  selama  kegiatan pengambilan sampel.

## Analisis Data
Data  hasil  identifikasi  endoparasit yang  menyerang  ikan  kerapu  tikus  dianalisis secara  deskriptif  dan  disajikan  dalam  bentuk gambar  dan  tabel.  Nilai  prevalensi  dihitung untuk  setiap  spesies  parasit  (Steel and Torrie, 1993).

## Hasil dan Pembahasan
Identifikasi Endoparasit
Hasil  identifikasi  endoparasit  pada saluran  pencernaan  ikan  kerapu  tikus  dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel  1.  Hasil  Identifikasi  Endoparasit  pada Saluran  Pencernaan  Ikan  Kerapu Tikus No. Lokasi Jenis Endoparasit yang ditemukan 1. Karamba 2 Camallanus carangis 2. Karamba 3 Echinostoma
Hasil  identifikasi  endoparasit  pada saluran pencernaan ikan kerapu tikus ditemukan 2  spesies  cacing  yaitu: Camallanus carangis yang  ditemukan  pada  lokasi  karamba  2  dan Echinostoma yang  ditemukan  pada  ikan  di lokasi karamba 3.
Cacing Camallanus  carangis dapat diidentifikasi  dari  bentuk bucal  capsule pada bagian  anterior  tubuh  untuk  menempel  dan mengambil  makanan  dari  inangnya.  Hal  ini sesuai  dengan  pernyataan  Untergasser,  (1989) dalam Adji,  (2008)  yaitu  Cacing  parasitik  ini memiliki bucal  capsule yang  dilapisi  kutikula yang  tebal  dan  sepasang  lekukan  pada bucal capsule .  Bentuk  seperti  ini  akan  membuat cacing  ini  dapat  memegang  dengan  kuat  ke dinding usus dan tidak dapat lepas. Cacing Echinostoma dapat diidentifikasi  karena  memiliki oral  sucker dan ventral  sucker yang  saling  berdekatan  dengan ukuran  yang  berbeda.  Pernyataan  ini  sesuai dengan pendapat Noble and Noble (1989) yang menyatakan bahwa cacing Echinostoma
Tabel 2.  Hasil Penghitungan Prevalensi Endoparasit Saluran Pencernaan Ikan Kerapu Tikus
Lokasi Jumlah Sampel yang Diambil (ekor) Jumlah Ikan yang terinfeksi (ekor) Prevalensi (%) + - Karamba 1 15 0 15 0 Karamba 2 15 2 13 13,33 Karamba 3 15 4 11 26,67 Karamba 4 15 0 15 0
Tabel 3. Hasil pengukuran kualitas air
No Parameter KJA 1 KJA 2 KJA 3 KJA 4 1. Suhu 31°C 31°C 30°C 31°C 2. Salinitas 35 ppt 35 ppt 34 ppt 34 ppt 3. pH 7 7 7 7
merupakan  cacing  yang  berbentuk  memanjang dengan  dua  alat  penghisap  yang  saling berdekatan.  Alat  penghisap  perut  ( ventral sucker ) berukuran lebih besar dibandingkan alat penghisap  mulut  ( oral  sucker ).  Selain  itu, cacing Echinostoma juga memiliki ovarium dan sepasang  testis  berbentuk  oval  dan  terletak tandem (Birmani et al., 2008).

## Prevalensi Endoparasit
Prevalensi  merupakan  persentase  ikan yang  terinfeksi  dibandingkan  dengan  seluruh ikan  sampel  yang  diperiksa  (Stasiun  Karantina Ikan  I  Hang  Nadim,  2010).  Hasil  penelitian menunjukkan bahwa tingkat prevalensi endoparasit  ikan  kerapu  tikus  pada  tiap  petak karamba  jaring  apung  berbeda-beda.  Data  hasil penghitungan  prevalensi  endoparasit  dapat dilihat pada Tabel 2.
Nilai  prevalensi  endoparasit  pada  ikan kerapu  tikus  di  karamba  jaring  apung  yaitu 13,33%  untuk Camallanus  carangis dan 26,67%  untuk Echinostoma .  Karamba  1  dan  4 tidak ditemukan ikan yang terinfeksi endoparasit, sehingga prevalensi masing-masing karamba adalah 0%. Karamba 2 dengan  jumlah ikan yang terinfeksi endoparasit jenis Camallanus carangis sejumlah 2 ekor, sehingga nilai prevalensinya  sebesar 13,33%. Karamba 3 dengan  jumlah  ikan  yang terinfeksi  endoparasit jenis Echinostoma sejumlah  4  ekor  sehingga nilai  prevalensinya  sebesar  26,67%.  Secara umum,  prevalensi  endoparasit  yang  menyerang ikan kerapu tikus di karamba jaring apung yaitu 10%
Nilai Kualitas Air Hasil  pengukuran  kualitas  air  pada lokasi  pengambilan  sampel  dapat  dilihat  pada Tabel 3.
Hasil  pengukuran  kualitas  air  pada  lokasi pengambilan  sampel  menunjukkan  kondisi perairan  masing-masing  lokasi  karamba  masih dalam  keadaan  normal.  Data  pengukuran kualitas  air  menunjukkan  nilai  kisaran  kualitas air yaitu: suhu 30-31°C, salinitas 34-35 ppt, dan pH 7.
Endoparasit adalah parasit yang menyerang  organ  dalam  tubuh  inangnya. Endoparasit dapat protozoa,
misalnya
Trypanosoma dan Eimeria ,  dan  endoparasit cacing, seperti Anisakis simplex
dan
Diphyllobotrium latum (Diba, 2009).
Endoparasit  yang  ditemukan  pada penelitian ini termasuk dalam phylum Nemathelminthes  dan  Platyhelminthes.  Cacing Camallanus carangis termasuk  dalam  Phylum
Nemathelminthes, Kelas Nematoda, Ordo
Camallanoidea,  Famili  Camallanidae,  Genus
Camallanus ,  dan  spesies Camallanus carangis (Rigby et al. , 1998).
Hasil  pewarnaan  menunjukkan  bahwa cacing Camallanus carangis memiliki  alat penempel  pada  bagian  anterior  tubuh.  Seperti dikemukakan oleh Moravec et al, (2006), organ khas  yang  dimiliki  oleh  cacing Camallanus yaitu  adanya bucal  capsule yang  digunakan untuk  menempel  pada  organ  inang  dan mengambil  makanan  dari  inang.  Cacing Camallanus  carangis jantan  memiliki  panjang 4,198-11,092 mm dan lebar 1,21-2,8 mm. Bucal capsule memiliki  panjang  1,19-1,52  mm  dan lebar  1,18-1,59  mm.  Cacing Camallanus carangis betina  memiliki  panjang  6,788-7,548 mm  dan  lebar  2,54-2,82  mm. Bucal  capsule memiliki panjang 1,62-1,73 mm dan lebar 1,62- 1,94 mm (Rigby, et al ., 1998).
Cacing  parasitik  ini  memiliki bucal capsule yang  dilapisi  kutikula  yang  tebal  dan sepasang lekukan pada bucal capsule . Mulutnya seperti  penjepit  yang  kuat,  berbingkai  yang dikelilingi  oleh  buku-buku  semacam  tanduk. Bentuk  seperti  ini  akan  membuat  cacing  ini dapat  memegang  dengan  kuat  ke  dinding  usus dan tidak dapat lepas. Tempat berkaitnya cacing ini  pada  usus  dapat  terjadi  pendarahan.  Mulut sampai  esofagus  memiliki  dinding  otot  yang tebal,  biasanya  esofagus  dilapisi  kutikula (Untergasser,  1989 dalam Adji,  2008).  Gambar Camallanus carangis dapat dilihat pada Gambar 1.
Cacing Echinostoma termasuk  dalam Phylum  Platyhelminthes,  Kelas  Trematoda,
Ordo  Prosostomata,  Family  Echinostomatidae, Genus Echinostoma .  (Soulsby,  1986).  Cacing ini  berbentuk  pipih  dengan  panjang  14,214- 15,885 mm dan lebar 1,499-1,642 mm (Birmani et  al .,  2008).  Cacing  ini  memiliki  karakteristik khas  yaitu  memiliki  2  alat  penghisap  ( sucker ), yaitu  penghisap  mulut  ( oral  sucker )  yang terletak  di  bagian  anterior  dan  penghisap  perut ( ventral sucker ) yang berukuran lebih besar dari oral  sucker .  Hal  ini  sesuai  dengan  pernyataan Kanev et  al., (1995)  yaitu Oral  sucker berukuran  diameter  0,17-0,26  mm  dan ventral sucker berukuran diameter 0,45-0,65 mm.
Cacing Echinostoma memiliki  duri pada  bagian oral  sucker dan ventral  sucker , ovarium dan sepasang testis berbentuk oval dan terletak  tandem.  Ovarium  berbentuk  bulat dengan diameter 0,428-0,571 mm. Testis bagian anterior  memiliki  ukuran  panjang  1,071-1,178 mm  dan  lebar  0,285-0,399  mm  dan  pada  testis bagian  posterior  memiliki  panjang  0,999-1,142 mm  dan  lebar  0,285-0,371  mm.  Jarak  antara testis  bagian anterior dan posterior  yaitu 0,464-
0,785  mm  (Birmani et  al .,  2008).  Gambar cacing Echinostoma dapat  dilihat  pada  Gambar 2.
Infeksi  cacing  endoparasit  pada  ikan tidak  menunjukkan  gejala  klinis  yang  khas,  hal ini terlihat pada ikan sampel yang menunjukkan tingkah laku dan nafsu makan yang normal. Hal ini  sesuai  dengan  pernyataan  Sarjito  dan Desrina,  (2005)  yang  menyebutkan  infeksi cacing  endoparasit  tidak  menunjukkan  gejala klinis  eksternal  yang  jelas  (misalnya  luka  pada tubuh  atau  adanya  kista)  sehingga  tidak terdeteksi dengan cepat, akan tetapi keberadaan cacing ini terlihat jika ikan dibedah dan diamati organ  dalamnya.  Selain  itu,  keberadaan  cacing endoparasit  pada  ikan  dapat  menyebabkan gangguan  pertumbuhan  pada  tingkat  infeksi
yang tinggi dan tidak  menunjukkan gejala pada tingkat infeksi yang rendah (Hassan, 2008)
Ikan  yang  terinfeksi  endoparasit  akan menyebabkan  penurunan  nafsu  makan  yang kemudian akan berpengaruh terhadap pertumbuhan.  Sebagaimana  dikemukakan  oleh Sarjito  dan  Desrina  (2005)  yaitu  infeksi endoparasit menyebabkan penurunan fekunditas telur,  meningkatkan  kerentanan  ikan  terhadap patogen  lain  seperti  virus  dan  bakteri  serta pertumbuhan yang terhambat.
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa tingkat  prevalensi  tiap  petak  karamba  jaring apung  berbeda-beda.  Petakan  karamba  pertama dan  keempat  menunjukkan  nilai  prevalensi sebesar  0%  yang  berarti  bahwa  sampel  ikan yang  diambil  dari  petakan  karamba  tersebut tidak  ada  yang  terinfeksi  endoparasit.  Nilai
A
B Gambar 1. Hasil pewarnaan Camallanus carangis dengan pembesaran 100x.
Keterangan: a. Bucal capsule pada bagian anterior. b. Alat kelamin jantan pada bagian posterior.
Gambar 2. Echinostoma
Keterangan :
A.  Hasil  pengamatan  natif  dengan  perbesaran  100x.  Bagian  anterior  dengan Oral  sucker (a)  dan Ventral sucker (b). B.  Hasil pewarnaan dengan perbesaran 40x. Telur (a), Testis (b), Vitellaria (c).
prevalensi  tersebut  menurut  William and Bunkley-William,  (1996) dalam Adji,  (2008) termasuk  dalam  kategori almost  never (tidak pernah).  Petakan  karamba  kedua  menunjukkan nilai  prevalensi  sebesar  13,33%  dan  termasuk dalam  kategori often (sering)  dan  petakan karamba  ketiga  menunjukkan  nilai  prevalensi sebesar  26,67%  yang  termasuk  dalam  kategori often (sering).  Sedangkan  secara  umum, prevalensi  endoparasit  yang  menyerang  ikan kerapu tikus di karamba jaring apung yaitu 10% dengan kategori often (sering).
Prevalensi endoparasit
tertinggi terdapat  pada  petakan  karamba  ketiga  yaitu sebesar  26,67%  dan  berdasarkan  penelitian kelompok,  pada  petakan  karamba  ketiga  juga memiliki  prevalensi  ektoparasit  tertinggi  yaitu 53,33%.  Hal  ini  kemungkinan  disebabkan karena  kondisi  jaring  yang  kotor,  sehingga banyak  ditempeli  oleh  hewan  liar  dari  kelas Crustacea  dan  Molusca  serta  tumbuhan  alga. Hewan  liar  tersebut  dapat  berperan  sebagai inang  perantara  beberapa  endoparasit,  seperti yang  dikemukakan  oleh  Ruckert et  al. ,  (2009) yaitu  keberadaan  endoparasit  dalam  tubuh  ikan juga  dipengaruhi  oleh  adanya  organisme invertebrata,  misalnya  Crustacea  dan  Molusca di  sekitar  lokasi  budidaya.  Organisme  tersebut berperan  sebagai  inang  perantara  dari  beberapa spesies endoparasit.
Lafferty, (2011)
menyatakan  bahwa  ikan  dapat  terinfeksi endoparasit  dikarenakan  adanya  parasit  pada pakan  yang  diberikan  baik  dalam  bentuk  telur maupun  stadia  larva.  Selain  itu,  kondisi lingkungan  yang  kotor  juga  menyebabkan  ikan menjadi stress yang akhirnya dapat menurunkan sistem  imun  ikan  tersebut.  Sebagaimana dikemukakan  oleh  Yuliartati,  (2011)  yaitu faktor yang  memicu  timbulnya stress pada  ikan yaitu  ketidakseimbangan  interaksi  faktor  biotik (organisme)  dan  faktor  abiotik  (lingkungan) yang  menyebabkan  daya  tubuh  ikan  menurun dan mudah terserang penyakit.
Prevalensi  terendah  terdapat  pada petakan  karamba  pertama  dan  keempat  yaitu sebesar 0%, dan berdasarkan penelitian kelompok,  pada  petakan  karamba  pertama  dan keempat  juga  memiliki  prevalensi  ektoparasit terendah  yaitu  masing-masing  26,67%.  Hal  ini disebabkan  karena  kondisi  jaring  yang  lebih bersih,  yaitu  dibersihkan  setiap  satu  bulan sekali.  Sesuai  dengan  pernyataan  Usman, (2011)  yaitu  pembersihan  jaring  karamba minimal  dilakukan  setiap  bulan,  karena  jaring karamba yang kotor merupakan media penempelan parasit dan penyakit serta mengganggu sirkulasi air. Selain itu,  rendahnya nilai  prevalensi  ini  disebabkan  oleh  keadaan
endemik  suatu  parasit,  kemampuan  adaptasi parasit  di  tubuh  inang,  kecocokan  inang  untuk kelangsungan  hidup  parasit  dan  kualitas lingkungan (Diba, 2009).
Nilai  kualitas  air  pada  penelitian  ini didapatkan  kisaran  nilai  kualitas  air  yang normal yaitu: suhu 30-31°C, salinitas 34-35 ppt, dan pH 7. Nilai kualitas air ini  merupakan nilai yang optimum untuk budidaya ikan kerapu tikus sebagaimana  dinyatakan  oleh  Kangkan  dkk. (2007)  yaitu  suhu  optimal  untuk  budidaya  ikan kerapu  tikus  yaitu  27-32°C,  salinitas  33-35  ppt dan pH 7,6-8,7.

## Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian  dapat disimpulkan bahwa : Endoparasit yang menyerang  saluran  pencernaan  ikan  kerapu tikus  ( Cromileptes  altivelis )  di  karamba  jaring apung Unit Pengelola Budidaya Laut, Situbondo,  Jawa  Timur  adalah Camallanus carangis (Nematoda: Camallanidae) dan
Echinostoma (Trematoda: Echinostomatidae).
Prevalensi  endoparasit  yang  menyerang  saluran pencernaan  ikan  kerapu  tikus  ( Cromileptes altivelis )  di  karamba  jaring  apung  Unit Pengelola  Budidaya  Laut  Situbondo,  Jawa Timur  adalah  10%,  sehingga  termasuk  dalam kategori often (sering).
Saran  yang  dapat  diberikan  penulis yaitu  perlu  dilakukan  manajemen  pembersihan jaring  yang  teratur  dan  berkala  agar  kondisi jaring  tetap  bersih  dan  mencegah  penempelan oleh hama yang merupakan inang perantara dari endoparasit.

## Daftar Pustaka
Adji,  A.O.S.  2008.  Studi  Keragaman  Cacing Parasitik  pada  Saluran  Pencernaan  Ikan Gurami  ( Osphronemus  gouramy )  dan Ikan  Tongkol  ( Euthynnus spp.).  Skripsi.
Fakultas  Kedokteran  Hewan.  Institut Pertanian Bogor. Bogor. 51 hal.
Anshary,  H.  2008.  Modul  Pembelajaran Berbasis Student Center Learning (SCL)
Mata Kuliah Parasitologi Ikan. Lembaga Kajian  dan  Pengembangan  Pendidikan (LKPP). Universitas Hasanuddin. Makassar. 126 hal. Asaad,  A.I.J.,  Makmur,  Rachmansyah,  M.C. Undu  dan  Muawanah.  2010.  Analisis Faktor  Kondisi  Kontinuitas  Budidaya
Keramba Jaring Apung di Teluk Lampung.  Prosiding  Forum  Inovasi Teknologi Akuakultur. BBRBAP. Maros. 7 hal. Balai  Karantina  Ikan  Batam.  2007.  Laporan
Pemantauan  HPI/HPIK  Tahun  2007.
Balai  Karantina  Ikan  Batam.  Batam.  52 hal.
Birmani,  N.A.,  A.M.  Dharejo  and  M.M.  Khan.
2008. Echinostoma  atrae ,  New  Spesies (Digenea:  Echinostomatidae)  in  Black Coot Fulica  atra (Aves:  Rallidae)  of Manchhar Lake, Sindh, Pakistan. Journal of Pakistan Zoology 40(5): 379-383.
Bunga,  M.  2008.  Prevalensi  dan  Intensitas Serangan  Parasit Diplectanum sp.  Pada Insang Ikan Kerapu Macan ( Epinephelus fuscoguttatus ,  Forsskal)  di  Keramba Jaring  Apung.  Jurnal  Ilmu  Kelautan  dan Perikanan Universitas Hasanuddin 18 (3)
: 204-210.
Bunga,  M.,  A.  Rantetondok  dan  H.  Anshary.
2009.  Tingkat  Infeksi,  Mikrohabitat  dan Patologis  Parasit Diplectanum sp.  pada Insang Ikan Kerapu Macan ( Epinephelus fuscoguttatus, Forsskal)  di  Keramba Jaring Apung. Jurnal Sains dan
Teknologi 9 (2) : 73-80.
Diba,  D.F.  2009.  Prevalensi  dan  Intensitas Infestasi  Endoparasit  Berdasarkan  Hasil Analisis  Feses  Kura-kura  Air  Tawar ( Coura amboinensis ) di Perairan Sulawesi Selatan. Tesis. Sekolah Pascasarjana.  Institut  Pertanian  Bogor.
Bogor. 47 hal.
Hassan, M. 2008. Parasites of Native and Exotic
Freshwater  Fishes  in  the  South-West  of Western  Australia.  Thesis.  Murdoch University. Perth, Western Australia. 173 hal.
Kanev,  I.,V.Dimitrov,  V.Radev,  B.Fried.  1995. Redescription  of Echinostoma  jurini (Skvortzov,  1924)  with  a  Discussion  of its  Identity  and  Characteristics.  Journal Naturhistorisches  Musium  Wien  97B:
37-53.
Kangkan,  A.L.,  A.  Hartoko,  Suminto.  2007. Studi Penentuan Lokasi untuk Pengembangan Budidaya Laut Berdasarkan  Parameter  Fisika,  Kimia, dan  Biologi  di  Teluk  Kupang,  Nusa Tenggara Timur. Jurnal Pasir Laut 3 (1):
76-93.
Kuhlmann,  W.F.  2006.  Preservation,  Staining, and Mounting Parasite Spesiment. http://www.facstaff.unca.com . 17/12/2011. 8 p.
Lafferty,  K.  2011.  Fish  Parasites  and  Food Webs.  International  Symposium  of  Fish Parasites.  26-30  September  2011.  Vina del Mar. Chile. 197 p.
Melianawati  R.,  R.  Andamari,  dan  I.  Setyadi. 2010.  Identifikasi  Profil  Aktifitas  Enzim Pencernaan  untuk  Optimasi  Pemanfatan
Pakan  dalam  Usaha  Budidaya  Ikan Kerapu  Bebek  ( Cromileptes  altivelis ). Badan  Penelitian  dan  Pengembangan Kelautan  dan  Perikanan.  Kementerian Kelautan dan Perikanan. Jakarta. 28 hal.
Moravec, F., J.L. Justine and M.C. Rigby. 2006.
Some  Camallanid  Nematodes  from Marine  Perciform  Fishes  Off  New Caledonia.  Journal  Folia  Parasitologica 53: 223-239.
Noble, G.A and E.R. Noble. 1989. Parasitologi : Biologi  Parasit  Hewan. Terjemahan : Wardiarto.  Gadjah  Mada  University Press. Yogyakarta. hal 3-44.
Rigby,  M.C.,  M.L.  Adamson,  and  T.L. Deardorf.  1998. Camallanus  carangis Olsen,  1954  (Nematoda:  Camallanidae) Reported  from  French  Polynesia  and Hawai  with  a  Redescription  of  the Spesies.  Journal  of  Parasitology  84  (1): 158-162.
Ruckert,  S.,  S.Klimpel,  S.  Al-Quraishy,  H. Mehlhorn,  and  H.W.  Palm.  2009. Transmission  of  Fish  Parasites  into Grouper Mariculture (Serranidae: Epinephelus  coioides (Hamilton,  1882)) in  Lampung  Bay,  Indonesia.  Journal Parasitology  Reseach  (2009)  104:  523- 532.
Sarjito  dan  Desrina.  2005.  Analisa  Infeksi Cacing  Endoparasit  pada  Ikan  Kakap
Putih  ( Lates  calcarifer Bloch)  dari Perairan Pantai Demak. Laporan Kegiatan  Hasil  Penelitian  Dosen  Muda. Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan. Universitas  Diponegoro.  Semarang.  18
hal.
Soedarto.  2008.  Parasitologi  Klinik.  Airlangga
University Press. Surabaya. hal 8-18.
Soulsby,  E.J.L.1986.  Helminth,  Antropods,  and
Protozoa  of  Domesticated  Animals.  7 th
ed. Baillere Tindall. London.
Stasiun  Karantina  Ikan  Kelas  I  Hang  Nadim Batam.  2010.  Laporan  Pemantauan  HPI dan HPIK. Stasiun Karantina Ikan  Kelas I Hang Nadim Batam. Batam. 57 hal.
Steel  R.  G.  and  Torrie  J.  H.  1993.  Prinsip Prosedur  Statistika.  Terjemahan  Oleh Bambang Sumantri. Gramedia. Jakarta.
Subekti,  S.  dan  G.  Mahasri.  2010.  Buku  Ajar Parasit dan Penyakit Ikan (Trematodiasis dan  Cestodiasis).  Global  Persada  Press. Surabaya. 91 hal.
Usman.  2011.  Budidaya  Ikan  dalam  Keramba Jaring  Apung.  Balai  Riset  Perikanan Budidaya  Air  Payau  Maros,  Sulawesi Selatan. 42 hal.
Yuasa  L.  dan  N.  Kei.  2003.  Panduan  Diagnosa
Penyakit  Ikan.  Balai  Budidaya  Air Tawar. Jambi. 37 hal. Yuliartati, E. 2011. Tingkat Serangan
Ektoparasit  pada  Ikan  Patin  ( Pangasius djambal )  pada  Beberapa  Pembudidaya Ikan di Kota Makassar. Skripsi. Program Studi Budidaya Perairan. Jurusan Perikanan.  Fakultas  Ilmu  Kelautan  dan Perikanan. Universitas Hasanuddin. Makassar. 65 hal. Zulkifli,  A.K.,  M.  Nasir  U.,  T.  Iskandar, Mukhlisuddin, A. Azis, Yulham, Bahrun. 2000.  Rakitan  Teknologi  Budidaya
Kerapu  dalam  Keramba  Jaring  Apung (KJA).  Modul  Pembelajaran  Universitas Syiah Kuala Banda Aceh. Aceh. 9 hal.