## IDENTIFIKASI BAKTERI PADA PLAK GIGI PASIEN DI PUSKESMAS BAHU MANADO DAN UJI RESISTENSI TERHADAP ANTIBIOTIK GOLONGAN PENISILIN DAN SEFALOSPORIN
Anisa Mellani Amelia Turangan 1) , Fatimawali 1) , Henki Rotinsulu 1)
1) Program Studi Farmasi FMIPA UNSRAT Manado, 95115

## ABSTRACT
Dental  plaque  is  a  disease  that  most  commonly  found  in  the  oral  cavity  of  Caries  and Periodontal,  so  it  is  a  major  problem  of  oral  and  dental  health.  The  treatment  used  to  control  dental plaque is usually an antibiotic. This study aims to determine the resistant levels of bacteria isolated and identified from dental plaque against Penicillin (Ampicillin) and Cephalosporin (Cefadroxil) antibiotics. This  research  was  conducted  by  taking samples  of  dental  plaque  to  be  isolated,  bacterial  identification and  resistance  test  against  antibiotics  according  to  CLSI  standard  (Clinical  Laboratory  Standards Institute)  using  disc  diffusion  method.  The  results  of  this  study  shows  that  the  identified  bacteria  from dental  plaque  isolates  are  Bacillus  sp.,  Enterococcus  sp.,  Streptococcus  sp.,  Veillonella  sp.,  and Lactobacillus  sp.,  which  is  resistant  to  Ampicillin  antibiotics.  Types  /  genera  of  Bacillus  sp., Streptococcus sp., and Lactobacillus sp., shows intermediate action against antibiotics Ampicillin, as well as  species  /  genus  of  bacteria  Veillonella  sp.,  shows  sensitive  action  to  antibiotics  Ampicillin.  Type  / genus  of  bacteria  Enterococcus  sp.,  Veillonella  sp.,  and  Lactobacillus  sp.,  shows  resistant  action  to Cefadroxil antibiotics. Types / genera of  Bacillus sp., and Streptococcus sp., shows intermediate action against Cefadroxil antibiotics, as well as species / genera of Bacillus sp., Lactobacillus sp., Enterococcus sp.,  and  Streptococcus  sp.,  shows  sensitive  to  Cefadroxil  antibiotics.  Antibiotics  Ampicillin  have  a  high resistance to bacteria isolated from dental plaque by 58%.

## Keywords : Dental plaque, antibiotics, bacteria

## ABSTRAK
Plak  gigi  merupakan  penyakit  yang  paling  banyak  dijumpai  di  rongga  mulut  yaitu  Karies  dan Periodontal, sehingga merupakan masalah utama kesehatan gigi dan mulut.  Pengobatan yang digunakan untuk mengontrol plak gigi biasanya adalah antibiotik. Penelitian ini bertujuan untuk menentukan tingkat resisten  bakteri  yang  diisolasi  dan  diidentifikasi  dari  plak  gigi  terhadap  antibiotik  golongan  Penisilin (Ampisilin) dan Sefalosporin (Sefadroksil). Penelitian ini dilakukan dengan mengambil sampel plak gigi untuk  diisolasi,  identifikasi  bakteri  serta  uji  resistensinya  terhadap  antibiotik  sesuai  standart  CLSI ( Clinical Laboratory Standards Institute ) dengan menggunakan metode disc diffusion. Hasil penelitian ini menunjukan  bakteri  yang  teridentifikasi  dari  isolat  plak  gigi  adalah Bacillus  sp,  Enterococcus  sp, Streptococcus sp, Veillonella sp, dan Lactobacillus sp resisten terhadap antibiotik Ampisilin. Jenis/genus bakteri Bacillus  sp,  Streptococcus  sp, dan Lactobacillus  sp intermediate  terhadap  antibiotik  Ampisilin, serta  jenis/genus  bakteri Veillonella  sp sensitif  terhadap  antibiotik  Ampisilin.  Jenis/genus  bakteri Enterococcus sp, Veillonella sp, dan Lactobacillus sp resisten terhadap antibiotik Sefadroksil. Jenis/genus bakteri Bacillus  sp dan Streptococcus  sp intermediate  terhadap  antibiotik  Sefadroksil,  serta  jenis/genus bakteri Bacillus sp, Lactobacillus sp, Enterococcus sp, dan Streptococcus sp sensitif terhadap antibiotik Sefadroksil.  Antibiotik  Ampisilin  memiliki  tingkat  resisten  yang  tinggi  terhadap  bakteri  yang  di  isolasi dari plak gigi sebesar 58%.
Kata kunci : Plak gigi, antibiotik, bakteri

## PENDAHULUAN
Kesehatan  gigi  dan  mulut  telah menjadi  perhatian  masyarakat  luas,  karena merupakan  salah  satu  unsur  yang  sangat penting  untuk  menunjang  kesehatan  tubuh (Soetantini, 2007). Kesehatan gigi dan mulut adalah bagian yang esensial dan integral dari kesehatan umum baik dalam berbagai aspek kehidupan  sehari-hari  seperti  makanan, minuman,  bicara  dan  bersosialisasi  (Murray et al , 1998).
Tujuan kesehatan mulut adalah menghilangkan  plak  secara  teratur  untuk mencegah  plak  tidak  tertimbun  dan  lama- kelamaan  menyebabkan  kerusakan  pada jaringan.  Bakteri  rongga  mulut  tersebar  di saliva,  lidah  pipi,  permukaan  gigi  terutama pada fisura dan leher gigi (Manson dan Eley, 1989).
Laporan  Survei  Kesehatan  Rumah Tangga (SKRT) di Indonesia yang dilakukan  oleh  Depkes  RI  tahun  2001 menyatakan  bahwa  pravalensi  penyakit  gigi dan  mulut  adalah  tertinggi  meliputi  60% penduduk.  Karies  gigi  merupakan  penyakit yang  paling  banyak  dijumpai  di  rongga mulut bersama-sama dengan penyakit periodontal,  sehingga  merupakan  masalah utama kesehatan gigi dan mulut (Depkes RI, 2002).
Untuk  mencegah  akumulasi  plak dilakukan  pengontrolan  plak  dengan  benar. Ada 3 macam cara dalam pengontrolan plak yaitu secara kimia, irigasi dan mekanis yaitu dengan menyikat gigi (Houwink dkk, 1993). Bakteri  di  dalam  plak  yang  berakumulasi dapat  menyebabkan  terjadinya  berbagai macam  penyakit  gigi  dan  mulut.  Oleh karena  itu,  pembentukan  plak  gigi  harus dihindari  dengan  menjaga  kesehatan  gigi
dan  mulut.  Upaya  ini  sebaiknya  dilakukan sejak dini dengan cara memelihara kebersihan mulut untuk menghilangkan plak dan bakteri (Houwink dkk, 1993).
Salah  satu  tindakan  yang  dilakuakan yaitu  dengan  menggunakan  Antibiotik. Antibiotik golongan β- laktam banyak digunakan first  line  therapy infeksi  bakteri. Penisilin  adalah  jenis  antibiotika β -laktam yang  pertama  kali  digunakan,  karena  dapat menekan
pertumbuhan dan perkembangbiakan  mikroorganisme  rongga mulut (Sunarso, 1997).
Berdasarkan  latar  belakang  tersebut penulis  tertarik  melakukan  identifikasi bakteri  yang terdapat  pada plak  gigi  dan uji resistensi  terhadap  antibiotik  golongan Penisilin  (Ampisilin)  dan  Sefalosporin (Sefadroksil) di Puskesmas Bahu Manado.

## METODOLOGI PENELITIAN Waktu dan Tempat Penelitian
Waktu  penelitian  dilaksanakan  dari bulan  September  2016  sampai  dengan Februari  2017.  Tempat  penelitian  dilakukan di  Laboratorium  Mikrobiologi  Program Studi  Farmasi,  Fakultas  Matematika  dan Ilmu  Pengetahuan  Alam,  Universitas  Sam Ratulangi.

## Jenis dan Rancangan Penelitian
Penelitian  ini  meggunakan  metode deskriptif  eksploratif.  Pada  uji  resistensi terhadap  antibiotik  menggunakan  metode difusi  yaitu  metode disc  diffusion yang digunakan  untuk  menentukan  aktivitas  gen antibakteri (Pratiwi, 2008).

## Alat dan Bahan
Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  ialah cawan petri ( Normax ), vial sampel plak gigi,
lampu  bunsen,  inkubator  ( Incucell ),  tabung reaksi  ( Pyrex ),  kaca  objek,  mikroskop ( Olympus ), jarum ӧse, erlenmeyer ( Approx ), gelas  ukur  ( Pyrex ),  gelas  kimia  ( Approx ), rak  tabung  reaksi,  plastik wrap ,  aluminium foil, kapas, kasa, timbangan analitik ( Kern ), pinset,  laminar  air  flow  ( Biotek ),  autoklaf (ALP),  mikropipet  ( Ecopipette ), L-Glass , vortex ( Benchmark ), mistar berskala dan alat fotografi. Sampel yang digunakan ialah plak gigi.  Bahan  kimia  yang  digunakan  ialah lugol,  alkohol  96%,  kristal  violet,  aquades, safranin,  NaCl  0,9%,  H 2 SO 4 dan  BaCl 2 . Antibiotik yang digunakan ialah Amoksisilin dan  Siprofloksasin dalam bentuk cakram. Media yang digunakan ialah Luria  Bertani  Agar ( yeast  extract,  agar bacteriological, dan  tripton ),  Simmon’s Citrate  Agar ( Oxoid ), Lysine  Iron  Agar ( Oxoid ), Triple Sugar Iron Agar ( Oxoid ).

## Prosedur Kerja
Sterilisasi Alat
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian  aktivitas  ini  disterilkan  terlebih dahulu. Alat-alat gelas dan media disterilkan dalam  autoklaf  pada  suhu  121°C  selama  15 menit.  Sedangkan  jarum  ӧse  dan  L-Glass dipijarkan  dengan  pembakaran  diatas  api langsung.
Pembuatan Media Pembuatan Media Luria Brtani Agar Media  LB  Agar  dibuat  dengan menimbang  tripton  4  gram,  NaCl  4  gram, yeast extract 2 gram dan agar bacteriological 6 gram, dimasukkan kedalam  Erlenmeyer  dan  dilarutkan  dengan aquades  400  mL  kemudian  dihomogenkan. Media  yang  sudah  homogen  ini  disterilkan dalam  autoklaf  pada  suhu  121°C  selama  15
menit,  kemudian  dituangkan  pada  masing- masing  cawan  petri  sebanyak  20  mL  dan didinginkan  sampai  memadat.  Media  ini digunakan  untuk  inokulasi  bakteri  dan  uji kepekaan terhadap antibiotik.
Pembuatan  Media Luria  Bertani  Agar

## Miring
Media  LB  agar  miring  dibuat  dengan menimbang  tripton  2  gram,  NaCl  2  gram, yeast extract 1 gram dan agar bacteriological sebanyak  3  gram,  kemudian dimasukkan kedalam Erlenmeyer dan dilarutkan  dengan  aquades  sampai  200  mL kemudian dihomogenkan. Media yang sudah homogen ini disterilkan dalam autoclaf pada suhu  121°C  selama  15  menit,  kemudian dituangkan  pada  masing-masing  tabung reaksi  sebanyak  5  mL  dan  didinginkan sampai memadat pada kemiringan 30°.

## Inokulasi Bakteri Pada Media
Diambil plak gigi sebanyak 1 mL pada vial yang sudah divortex kemudian dimasukan  pada  tabung  reaksi  yang  telah berisi 9 mL NaCl 0.9%. Selanjutnya dipipet sebanyak  1000  µL  suspensi  bakteri  dan dituangkan  keatas  cawan  petri  kemudian tuangkan  media Luria  Bertani  Agar  Plate . Selanjutkan  di  Seal  Cawan  petri  dengan plastik  Wrap.  Plak  gigi  yang  mengandung bakteri  yang  telah  ditanamkan  pada  media Luria  Bertani  Agar  Plate selanjutnya diinkubasi  selama  minimal  18  jam,  tetapi reinkubasi tambahan selama 24 jam diindikasikan  jika  pada  pertumbuhannya kurang  dari  yang  perkiraan,  atau  jika  hanya terdapat  sedikit  koloni  (Vandepitte  dkk, 2010).

## Isolasi Bakteri
Setiap  koloni  yang  telah  ditanamkan pada  media Luria  Bertani  Agar  Plate
diambil  menggunakan  jarum  ӧse  untuk dipindahkan  ke  media  agar  di  dalam  cawan petri  dengan  membentuk  garis  zig-zag selanjutnya diinkubasi dalam inkubator pada suhu 35-36 C selama ± 18 – 24 jam. Setelah itu,  bakteri  yang  tumbuh  dalam  media  agar dalam  cawan  petri  tersebut  kemudian dipindahkan  menggunakan  jarum  ӧse dengan  membentuk  garis  zig-zag  ke  media agar  miring  untuk  mendapatkan  isolat bakteri selanjutnya diinkubasi dalam inkubator pada suhu 35-36 C selama ± 18 – 24 jam (Vandepitte dkk , 2010).
Identifikasi Bakteri Uji bakteri bertujuan untuk mengetahui jenis/genus bakteri yang terdapat  pada  plak  gigi.  Hal  ini  dilakukan dengan beberapa pengujian.
Uji morfologi dilakukan dengan pewarnaan  gram  yang  bertujuan  untuk memudahkan melihat bakteri dengan mikroskop,  memperjelas  ukuran  dan  bentuk bakteri,  melihat  struktur  luar  dan  struktur dalam  seperti  dinding  sel  dan  vakuola, menghasilkan  sifat-sifat  fisik  dan  kimia yang  khas  dari  bakteri  dengan  zat  warna, serta  menentukan  bentuk  bakteri  apakah berupa basil, kokus atau spiral.
Uji  fisiologi  dilakukan  dengan  uji motilitas  yang  bertujuan  untuk  mengetahui apakah  bakteri  yang  diuji  dapat  melakukan pergerakan  atau  tidak.  Prosedur  kerja  uji motilitas  yaitu  :  disiapkan  media  motility test  medium,  kemudian  media  disterilkan dalam  autoclaf  pada  suhu  121 C  selama  15 menit.  Setelah  itu  media  dimasukkan  dalam tabung  reaksi  masing-masing  3  mL,  lalu didinginkan  hingga  memadat.  Setelah  itu, bakteri  isolat  dari  agar  miring  diambil
menggunakan  jarum  inokulasi  lurus  dan diinokulasikan  ketabung  pengujian  dengan cara  ditusukkan  jarum  ose  sampai  ke  dasar media, kemudian diinkubasi pada suhu 37 C selama 24  jam.  Lakukan  pengamatan setelah 24 jam masa inkubasi.
Uji indol bertujuan untuk menentukan  kemampuan  isolate  uji dalam  mendegradasi  triptofan.  Untuk media  ini  digunakan  media  semi  padat (MIO) yang kaya akan triptofan.
Uji sitrat bertujuan untuk menentukan  kemampuan  bakteri  dalam menggunakan  sitrat  sebagai  sumber karbon dan energi.
Uji H2S bertujuan untuk menentukan kemampuan isolat  uji dalam memproduksi H2S melalui reduksi tiosulfat. Adanya endapan hitam menunjukkan terjadinya produksi H2S. Uji fermentasi karbohidrat bertujuan untuk menentukan kemampuan bakteri dalam mendegradasi dan menfermentasikan  karbohidrat  tertentu dengan memproduksi asam atau basa dan gas.
Uji  lysine digunakan untuk  melihat kemampuan
bakteri melakukan dekarboksilasi dalam asam amino berupa lysine melalui produksi ezim
dekarboksilasi. Proses dekarboksilasi lysine  sering  digunakan  bakteri  untuk menetralisasikan lingkungan asam menjadi basa. Uji katalase bertujuan untuk menentukan  kemampuan  bakteri  untuk mendegradasi hydrogen peroksida melalui produksi enzim katalase.
Uji Kepekaan Bakteri Terhadap Antibiotik
Pembuatan Larutan Mc Farland 0,5 Larutan H 2 SO 4 1 % sebanyak 99,5 ml dicampurkan  dengan  larutan  BaCl 2 .2H 2 O 1,175 % sebanyak 0,5 mL dalam Erlenmeyer.  Kemudian  dikocok  sampai terbentuk larutan yang keruh. Kekeruhan ini dipakai  sebagai  standar  kekeruhan  suspensi bakteri uji (Bresson dan Borges, 2004).

## Pembuatan Suspensi Bakteri Uji
Bakteri  uji  yang  telah  diinokulasi diambil  dengan  jarum  ӧse  steril  lalu disuspensikan ke dalam tabung yang berisi 5 mL  larutan  NaCl  0,9%  hingga  diperoleh kekeruhan  yang  sama  dengan  standar kekeruhan larutan Mc. Farland 0,5. Perlakuan  yang  sama  dilakukan  pada  setiap jenis bakteri uji (David and Stout, 1971).

## Penanaman Cakram Antibiotik
Dipipet  suspensi  bakteri  uji  sebanyak 200  μL  dan  dituangkan  ke  seluruh permukaan  media Luria  Bertani  Agar Plate selanjutnya diratakan menggunakan L-Glass dan  diamkan  selama  5  menit.  Tempatkan cakram Ampisilin 10 μg dan Sefadroksil 30 μg,  pada  permukaan  media Luria  Bertani Agar s Plate. Cakram  Antibiotik  ditekan menggunakan  pinset  agar  dapat  menempel secara  sempurna  di  permukaan  agar. Selanjutnya  diinkubasi  pada  suhu  37 C selama  18-24  jam.  Dibuat  tiga  kali  ulangan pada cawan petri yang berbeda.
Pengukuran dan Penetapan
Zona Hambat
Setelah inkubasi, diamati zona pertumbuhan  bakteri  di  sekitar  cakram antibiotik Ampisilin dan Sefadroksil.
Tingkat resistensi bakteri dibedakan menjadi 3  yakni  :  sensitif,  intermediet,  dan  resisten. Bakteri bersifat sensitif adalah jika terbentuk zona  bening  di  sekitar  cakram  antibiotik. Bakteri  bersifat  resisten  adalah  jika  tidak terbentuk  zona  bening  di  sekitar  cakram antibiotik,  dan  intermediet  adalah  jika terbentuk zona bening dengan diameter yang kecil  di  sekitar  cakram  antibiotik.  Daerah hambatan  antibiotik  terhadap  pertumbuhan bakteri diukur menggunakan mistar berskala atau  jangka  sorong  dengan  satuan  mm. Kemudian  zona  hambatan  dibandingkan berdasarkan  pedoman  CLSI  ( Clinical  and Laboratory Standart Institute ).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Sampel  plak  gigi  diperoleh  dari  3 pasien  di  Puskesmas  Bahu  Manado.  Dari hasil  isolasi  plak  gigi  didapatkan  12  isolat bakteri  yang  dapat  dilihat  dalam  Tabel berikut:
Tabel 1. Hasil Identifikasi Isolat Bakteri
Kode Isolat
Hasil Identifikasi
bakteri 10 1 -1 Bacillus sp 10 1 -2 Streptococcus sp 10 1 -3 Enterococcus sp 10 1 -4 Veillonella sp 10 2 -1 Streptococcus sp 10 2 -2 Veillonella sp 10 2 -3 Bacillus sp 10 2 -4 Lactobacillus sp 10 3 -1 Lactobacillus sp 10 3 -2 Enterococcus sp 10 3 -3 Streptococcus sp 10 3 -4 Lactobacillus sp
Dari  hasil  isolasi  dan  identifikasi bakteri yang diperoleh dari sampel plak gigi secara  Pewarnaan  Gram  dan  Uji  Biokimia terdapat  5 jenis  bakteri  yang  teridentifikasi, penentuan bakteri dilakukan dengan membandingkan  hasil  uji  yang  diperoleh dengan  data-data  yang  terdapat  dalam  buku
Bergey’s
Manual Determinative of Bacteriology . Uji Kepekaan Bakteri Terhadap Antibiotik
Uji kepekaan bakteri terhadap antibiotik  diperoleh  melalui  pengukuran diameter  zona  hambatan  yang  terbentuk setelah penempelan cakram antibiotik. Hasil pengukuran zona hambat selanjutnya dibandingkan  dengan  standar  diameter  zona hambatan  berdasarkan  pedoman  CLSI ( Clinical and Laboratory Standards
Institute ).  Pada  uji  kepekaan  digunakan  2 jenis cakram antibiotik, yaitu Ampisilin dan Sefadroksil.  Berikut  merupakan  Tabel  yang memuat  hasil  uji  kepekaan  bakteri  terhadap antibiotik Ampisilin dan Sefadroksil.
Tabel 2 . Uji Kepekaan Antibiotik
Keterangan : R= Resistensi, I= Intermediate, S= Sensitif
Berdasarkan hasil uji kepekaan antibiotik pada Tabel 2. antibiotik Ampisilin resisten terhadap 7 isolat bakteri, intermediate  terhadap  4  isolat  bakteri  dan hanya  sensitif  terhadap  1  isolat  bakteri,
sementara  antibiotik  Sefadroksil  resisten terhadap  5  isolat  bakteri,  intermediate terhadap  3  bakteri  dan  sensitif  terhadap  4 isolat bakteri.
Tabel 3. Persentase kepekaan bakteri dari isolat plak gigi terhadap antibiotik
Ampisilin dan Sefadroksil Antibiotik S I R Persentase (%) S I R Ampisilin 1 4 7 9% 33% 58% Sefadroksil 4 3 5 33% 25% 42% Keterangan : R= Resistensi, I= Intermediate, S= Sensitif Jenis Bakteri Uji Kepekaan Antibiotik Ampisilin Sefadroksil Zona Hambat  Kepekaan  Zona Hambat  Kepekaan Bacillus sp 12 R 16.7 I Streptococcus sp 15.2 I 16.5 I Enterococcus sp 8.6 R 11.8 R Veillonella sp 16.7 S 13.8 R Streptococcus sp 4.5 R 16.8 I Veillonella sp 13 R 14 R Bacillus sp 15.2 I 18.7 S Lactobacillus sp 14.5 I 14 R Lactobacillus sp 16.2 I 21 S Enterococcus sp 11.4 R 19.2 S Streptococcus sp 8.2 R 22 S Lactobacillus sp 8.2 R 13 R
Hasil  pengujian  kepekaan  bakteri  dari isolasi plak gigi terhadap antibiotik Ampisilin dan Sefadroksil dapat dilihat pada Tabel  3.  Menunjukkan  antibiotik  Ampisilin memiliki  tingkat  sensitifitas  sebesar  9%, intermediate  sebesar  33%  dan  resisten sebesar 58%. Sedangkan antibiotik Sefadroksil  memiliki  tingkat  sensitifitas sebesar  33%,  intermediate  sebesar  25%  dan resisten  sebesar  42%.  Hal  ini  menunjukkan bahwa antibiotik Ampisilin memiliki tingkat Resisten  lebih  tinggi  terhadap  bakteri  yang diisolasi  dari  plak  gigi  di  Puskesmas  Bahu Manado.
Penisilin dan
Sefalosporin
menghambat  protein  pengikat  Penisilin penicillin-binding protein (PBP) yang merupakan  enzim  dalam  membran  plasma sel bakteri yang secara normal terlibat dalam penambahan  asam  amino  yang  berikatan silang  dengan  peptidoglikan  dinding  sel bakteri. Resistensi bakteri terhadap Penisilin dapat  timbul  akibat  adanya  mutasi  yang menyebabkan dihasilkannya produksi protein pengikat Penisilin yang berbeda atau akibat  bakteri  memerlukan  gen-gen  protein pengikat  Penisilin  yang  baru.  Resisten terhadap  penisilin  juga  dapat  muncul  akibat bakteri  memiliki  sistem  transport  membran luar  (outer  membrane)  yang  terbatas,  yang mencegah  Penisilin  mencapai  membran sitoplasma (lokasi protein pengikat
Penisilin).  Hal  ini  dapat  terjadi  akibat adanya  mutasi  yang  mengubah  porin  yang terlibat  dalam  transport  melewati  membran luar.
Resistensi terhadap antibiotik golongan penisilin disebabkan oleh beberapa mekanisme  resistensi,  yaitu  pembentukan enzim yang merusak penisilin yaitu enzim β - laktamase dimana enzim ini akan menyebabkan  terbukanya  cincin β –laktam pada  Penisilin  dan  Sefalosporin  sehingga merusak aktivitas antimikroba, enzim autolisin  kuman  tidak  bekerja  sehingga timbul  sifat  toleran  kuman  terhadap  obat,
kuman  tidak  mempunyai  dinding  sel (misalnya  mikoplasma),  dan  perubahan penicillin-binding  protein (PBP)  atau  obat tidak  dapat  mencapai penicillin-binding protein (PBP)  (Departemen  Farmakologi dan Terapeutik FK UI, 2007).

## KESIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian yang telah dilakukan  dengan  isolasi  dan  identifikasi bakteri serta uji resistensi terhadap antibiotik dari  3  sampel  plak  gigi  di  Puskesmas  Bahu Manado adalah :
 Bakteri  yang  teridentifikasi  dari  3 sampel  plak  gigi  yaitu  5  jenis bakteri: Bacillus  sp , Enterococcus sp , Streptococcus  sp , Veillonella sp , dan Lactobacillus sp .
 Bakteri  yang  sensitif  terhadap Ampisilin  yaitu  : Veillonella  sp, bakteri  yang  intermediet  terhadap Ampisilin  yaitu  : Bacillus  sp, Streptococcus sp, dan Lactobacillus sp, serta  bakteri  yang  resistensi terhadap  Ampisilin  yaitu  : Bacillus sp,  Enterococcus  sp,  Streptococcus sp, Veillonella sp , dan Lactobacillus sp.
Sedangkan bakteri yang  sensitif  terhadap Sefadroksil  yaitu  : Bacillus  sp, Streptococcus  sp,  Enterococcus  sp , dan Lactobacillus  sp, bakteri  yang intermediet  terhadap  Sefadroksil yaitu : Bacillus sp , dan Streptococcus sp , serta bakteri yang resistensi terhadap Sefadroksil yaitu : Enterococcus sp, Veillonella sp, dan Lactobacillus  sp. Perlu dikurangi untuk pemakaian antibiotik Ampisilin karena memiliki  tingkat  resistensi  sebesar 58%. SARAN
 Berdasarkan penelitian yang dilakukan  perlu  dipertimbangkan untuk mengurangi penggunaan
antibiotik  Ampisilin  terhadap  plak gigi.
 Perlu  dilakukan  penelitian  lebih lanjut menggunakan antibiotik yang
berbeda untuk mengetahui
antibiotik  yang  tepat  untuk  plak gigi.

## DAFTAR PUSTAKA
Badan Penelitian dan Pengembangan
Kesehatan  Departemen  Kesehatan  RI.
2002.   Laporan  survei  Kesehatan
Rumah  Tangga  (SKRT)  2001: Studi Morbiditas dan Disabilitas .
Dalam SURKESNAS. Jakarta.
Bresson,  W.,  dan  M.T.  Borges.  2004. Delivery  Methods  for  Introducing EndophiticBacteria into Maize.
Biocontrol . 49: 315-322.
David,  W.W  and  Stout,  T.R.  1971. Disc Plate  Methods  of  Microbiological Antibiotic Assay . Microbiology.
Holt,  J.G.,  et  al.  1994. Bergey’s  Manual  of
Determinative  Bacteriology .  Williams
& Wilkins, USA.
Houwink,  B.O.B.D.,  Cramwinckel,  A.B.,
Crielaers,  P.J.A.,  Dermaut,  L.R., eijman,M.A.J., Huis,   J.H.J.,  Konig, K.G.,  Moltzer,  G.,  van  Palenstein Helderman,W.H.,  Pilot,  T.,  Roukema, PA., Schatteet,  H.H.T,  Van  de
Velden-Veldcamp,I., Woltgens, J.H.M. 1993. Ilmu Kedokteran  Gigi Pencegahan.  Alih  bahasa:  S.Suryo. Judul Asli: Preventieve
Thandeelkunde. 1984.   Gadjah  Mada
University Press, Yogyakarta.
Murray, P. R., Rosenthal, K. S., Kobayashi,
G.  S.,  Pfaller,  M.  A.  1998. Medical
Microbiology .  Third Edition. St. Louis: Mosby Inc.
Pratiwi,  S.  T.,  2008. Mikrobiologi  Farmasi . Erlangga, Jakarta.
Soetantini,  N.  2007. PDGI  Jatim  Edukasi Pos  Kesehatan  Pesantren .  [On  Line] http://www.suarasurabaya.net .
Staf Pengajar Bagian Mikrobiologi  Fakultas
Kedokteran  Universitas  Indonesia. 2002. Buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran . Binapura Aksara
Publisher, Jakarta.
Vandepitte,  J.,  K.  Engbaek,  P.  Rohner,  P.
Piot.,  C.C.  Heuck.  2010. Prosedur Laboratorium   Dasar Untuk Bakteriologi Klinis . Edisi 2. Terjemahan L. Setiawan. Buku Kedoktran ECG, Jakarta.