BIOTROPIKA Journal of Tropical Biology
https://biotropika.ub.ac.id/
Vol. 9   |   No. 3   |   2021  |   DOI: 10.21776/ub.biotropika.2021.009.03.10

## PEMECAHAN DORMANSI UMBI KENTANG (SOLANUM TUBEROSUM L. VAR. GRANOLA) MENGGUNAKAN LARUTAN GIBERELIN (GA3) DAN BENZIL AMINO
PURIN (BAP)
BREAKING DORMANCY OF POTATO TUBERS (Solanum tuberosum L. var. granola) USING GIBBERELLIN (GA3) AND BENZYL AMINO PURINE (BAP)
Wirian Febry Arisda 1) , Retno Mastuti 1)*

## ABSTRAK
Tahap  dormansi  umbi  kentang  berpeluang  menghambat  budidaya  kentang  karena  umbi yang  baru  dipanen  tidak  bisa  langsung  ditanam.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengevaluasi pengaruh perendaman umbi kentang pada larutan GA 3 dan BAP terhadap periode pemecahan dormansi umbi maupun pertumbuhan tunas kentang (S. tuberosum L. var. granola). Penelitian menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktorial dengan 3 faktor, yaitu umbi (A: utuh dan irisan), giberelin GA 3 (B: 0, 50, 100, dan 200 ppm), dan sitokinin BAP (C: 0, 50, 100, dan 200 ppm). Umbi kentang berukuran M yang telah dicuci bersih  direndam  dalam  fungisida  selama  3  detik  kemudian  ditiriskan.  Sebagian  umbi dibiarkan  utuh  dan  sebagian  lainnya  diiris  menjadi  dua  bagian.  Umbi  utuh  dan  irisan direndam  ke  dalam  larutan  GA 3 dan  BAP  tunggal  maupun  kombinasi  sesuai  perlakuan selama  30  menit,  selanjutnya  umbi  diletakkan  di  ruang  gelap.  Parameter  yang  diamati selama  59  hari  yaitu  waktu  muncul  tunas,  akhir  periode  dormansi,  jumlah  tunas  yang dihasilkan  umbi,  dan  panjang  tunas.  Data  dianalisis  dengan  ANOVA,  Uji  T  dan  Uji Duncan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa umbi irisan mampu memecahkan dormansi lebih cepat (10 HSP) dibanding umbi utuh (16 HSP). Umbi yang direndam pada larutan GA 3 50 ppm dan GA 3 100 ppm mampu bertunas lebih cepat yaitu 10 HSP.  Jumlah tunas yang dihasilkan hingga 59 HSP pada umbi irisan lebih banyak (66,9%)  dibanding umbi utuh  (34,7%).  Umbi  irisan  yang  direndam  dalam  larutan  GA 3 maupun  BAP  mampu menumbuhkan  tunas  lebih  panjang  (19,4  mm)  daripada  umbi  utuh  yang  direndam  GA 3 maupun BAP (3,6 mm). Rata-rata tunas terpanjang (19,4 mm) dihasilkan pada umbi irisan yang direndam dalam larutan GA 3 tunggal 100 ppm.
Kata kunci: dormansi, giberelin, irisan, sitokinin, umbi

## ABSTRACT
Dormancy stage of potato tubers can inhibit potato cultivation because the newly harvested tubers can’t be planted immediately. The aim of this study was to evaluate the effect of tuber soaking on GA 3 and BAP solution on the duration of tuber dormancy breaking and shoot growth  of  potato  (Solanum  tuberosum  L.  var.  granola).  This  research  used  factorial completely randomized design with 3 factors, tubers (A: whole and sliced), GA 3 (B: 0, 50, 100, and 200 ppm), and BAP (C: 0, 50, 100, and 200 ppm). Potato tubers were soaked in fungicide for 3 seconds. There were whole tubers and sliced tuber into 2 then the tubers were  soaked  in  PGR  solution  for  30  minutes,  the  tubers  were  placed  in  a  dark  room. Parameters observed for 59 days were the time for tubers sprouted, the ending of dormancy, the number  of  shoots  that  appeared  per tuber,  and  shoot  length. Data  were  analyzed  by ANOVA, T-test and Duncan test. The results showed that sliced tubers were able to break dormancy more quickly (10 DAT) than whole tubers (16 DAT). Tubers soaked in GA 3 50 ppm  and  GA 3 100 ppm  were  able  to  germinate  faster  at 10  DAT.  The  number  of  shoots produced by tubers up to 59 DAT in sliced tubers  was more (66.9%) than whole tubers (34.7%). Tuber that sliced and soaked in GA 3 or BAP were able to grow longer shoots (19,4 mm) than whole tubers that soaked in GA 3 or BAP  (3,6 mm).
Keyword: cutting, cytokinin, dormancy, gibberellin, tubers

## PENDAHULUAN
Kentang  ( Solanum  tuberosum L.)  adalah tanaman  pangan  yang  diproduksi  dan  dikonsumsi masyarakat  di  seluruh  dunia.  Varietas  kentang yang  banyak  dibudidayakan  di  Indonesia  yaitu cipanas,  atlantik dan granola .  Kentang  varietas granola merupakan  salah  satu  varietas  yang
memiliki  produktivitas  tinggi  mencapai  38-50 ton/ha, jumlah umbi per tanaman 12-20 buah, dan tahan  terhadap  serangan  penyakit  busuk  daun ( Phytophthora infestans ) dengan masa dormansi 3- 4 bulan [1].
Kentang  diproduksi  di  23  provinsi  di Indonesia.  Provinsi  penghasil  kentang  terbanyak
Diterima  : 1 Agustus 2021
Disetujui   : 4 Oktober 2021

## Afiliasi Penulis:
1) Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan  Alam,  Universitas Brawijaya,  Jl.  Veteran,  Malang, 65145.

## Email korespondensi:
*mastuti7@ub.ac.id
Cara sitasi: Arisda  WF,  R  Mastuti.  2021. Pemecahan dormansi umbi kentang  ( Solanum  tuberosum L. var. granola) menggunakan larutan giberelin (GA3) dan benzil amino  purin  (BAP). Journal  of Tropical Biology 9 (3): 253-261.
yaitu  Jawa  Tengah,  Jawa  Barat  dan  Jawa  Timur. Kota  penghasil  kentang  terbanyak  di  Jawa  Timur yaitu Pasuruan, Probolinggo, Malang, dan Batu. Di Kota  Batu  total  produksi  kentang  tahun  2018 mencapai  9.137,7  ton.    Jumlah  tersebut  masih belum  memenuhi  target  yang  ingin  dicapai sehingga  kentang  menjadi  salah  satu  komoditas tanaman hortikultura yang menjadi fokus pengembangan  hingga  tahun  2022  dengan  target 9.434,83  ton  [2].  Peningkatan  produksi  kentang dapat  dilakukan  dengan  perbanyakan  melalui umbi, stek batang, stek tunas, dan kultur jaringan. Perbanyakan  menggunakan  umbi  termasuk  cara konvensional  dan  masih  banyak  dilakukan  oleh petani  karena  lebih  mudah  dan  biayanya  relatif terjangkau.  Umumnya  perbanyakan  kentang melalui  umbi  memiliki  rasio  1:3  hingga  1:15. Artinya 1 benih umbi kentang mampu menghasilkan  3  hingga  15  umbi  baru.  Hal  ini dipengaruhi oleh jenis varietas dan perlakuan pada umbi  [3].  Umbi  yang  akan  dijadikan  benih  harus umbi  yang  sehat,  ditandai  dengan  tidak  adanya bagian  yang  busuk  pada  permukaan  umbi  serta umbi didapatkan dari tanaman induk yang sehat.
Umbi kentang memiliki dua ujung, yaitu basal yang berhubungan dengan stolon dan apikal yang berada  di  ujung  lain . Mata  tunas  umbi  kentang sebenarnya  adalah  nodus  batang.  Jumlah  mata tunas  umbi  yaitu  antara  2-14  tergantung  pada ukuran  umbi  [4].  Ukuran  umbi  kentang  cukup beragam antara lain ukuran SS (7- 10 g), S (11-30 g), M (31-60 g), L1 (61-90 g), L2 (91-120 g) dan ukuran konsumsi LL (> 121 g). Ukuran umbi yang banyak  dijadikan  benih  adalah  umbi  dengan ukuran  M.  Hal  ini  karena  umbi  yang  berukuran lebih  besar  berpeluang  menghasilkan  umbi-umbi baru  yang  berukuran  kecil  akibat  banyaknya jumlah  batang  yang  akan  terbentuk.  Selain  itu penggunaan  umbi  berukuran  besar  memerlukan biaya  yang  lebih  mahal  karena  benih  umbi berukuran  besar  harganya  lebih  mahal  dibanding umbi  berukuran  sedang.  Sedangkan  penggunaan umbi  yang  berukuran  lebih  kecil  menyebabkan pertumbuhan kentang terganggu akibat kurangnya cadangan makanan [5, 6].
Perbanyakan  kentang  menggunakan  umbi masih belum dapat memenuhi kebutuhan pengadaan benih dalam waktu yang singkat sebab benih kentang yang telah dipanen tidak bisa segera ditanam  kembali.  Hal  ini  dikarenakan  adanya periode  dormansi  pada  umbi  kentang.  Dormansi umbi  adalah  periode  atau  masa  ketika  proses pertumbuhan  tunas  tidak  terjadi.  Dormansi dipengaruhi  oleh  faktor  eksogen  seperti  suhu rendah dan cuaca serta faktor endogen seperti jenis varietas,  umur  umbi,  dan  kualitas  umbi.  Melalui dormansi,  umur  simpan  umbi  dapat  lebih  lama karena dapat mencegah terjadinya pertunasan pada
umbi.  Namun  dormansi  pada  kentang  juga menyebabkan  petani  kesulitan  mencari  benih kentang  karena  kentang  yang  baru  dipanen  harus menyelesaikan masa dormansi sebelum dilakukan penanaman kembali, sehingga kentang tidak dapat ditanam  sepanjang  tahun.  Oleh  karena  itu  untuk menghasilkan  benih  kentang  yang  dapat  ditanam sepanjang  tahun,  perlu  adanya  upaya  pemecahan dormansi  agar  umbi  kentang  dapat  lebih  cepat bertunas [7, 8].
Dormansi dapat dipecahkan dengan pemberian zat pengaruh tumbuh (ZPT) giberelin dan sitokinin. Giberelin diperlukan untuk memecahkan dormansi pada  tunas  dan  untuk  pertumbuhan  tunas  [9]. Giberelin mampu memecah pati dan gula di dalam umbi  yang  selanjutnya  digunakan  untuk  memicu pertunasan  [10].  Sitokinin  berperan  dalam stimulasi pembelahan sel. Dormansi pada tumbuhan salah satunya disebabkan karena sel-sel tunas meristem tertahan pada fase G1 pada siklus sel.  Keberadaan  sitokinin  mampu  membebaskan hambatan pada fase G1 siklus sel tersebut sehingga dapat memecah dormansi umbi [11].
Selain perlakuan ZPT, pengirisan umbi kentang juga  mampu  memecahkan  dormansi.  Perlakuan irisan  dapat  meningkatkan  respirasi  dan  sintesis RNA maupun protein pada umbi sebagai salah satu upaya  penyembuhan  luka.  Pengirisan  umbi  juga berperan dalam pemecahan dominansi apikal pada umbi.  Dominansi  apikal  yang  terhenti  akan memicu  tumbuhnya  tunas-tunas  lain  pada  umbi kentang  [12].  Pada  pengaplikasian  suatu  bahan kimia kulit umbi dapat menjadi penghambat, oleh karena  itu  adanya  perlakuan  pengirisan,  luas permukaan  penyerapan  yang  tidak  tertutup  kulit umbi  menjadi  bertambah.  Meskipun  demikian pengirisan  harus  dilakukan  dengan  hati-hati  agar tidak  merusak  mata  tunas  dan  meminimalisir serangan  bakteri,  jamur,  dan  virus  [8].  Melalui pengirisan  umbi,  biaya  produksi  juga  akan  lebih murah karena jumlah benih yang dibutuhkan akan lebih sedikit [13].
Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengevaluasi pengaruh  perendaman  umbi  pada  GA 3 dan  BAP terhadap  periode  pemecahan  dormansi  umbi maupun pertumbuhan tunas kentang (S. tuberosum L . var. granola ).

## METODE PENELITIAN
Penelitian  dilaksanakan  pada  bulan  Agustus 2020  hingga  Juli  2021.  Penelitian  dilakukan  di Dusun  Brumbung  RT  002  RW  006,  Desa Gunungsari, Kecamatan Bumiaji, Kota Batu. Letak geografisnya yaitu 7 o 50’ 21” LS dan 112 o 30’49” BT dengan suhu rata-rata 20 o C.
Persiapan  umbi. Umbi  kentang  varietas granola diperoleh  dari  kebun  kentang  Desa
Sumberbrantas,  Kecamatan  Bumiaji,  Kota  Batu yang  terletak  pada  ketinggian  1.500  mdpl.  Umbi kentang  yang  digunakan  berumur  14  hari  setelah panen dan berukuran M (31-60 g). Pemilahan umbi dilakukan dengan menimbang umbi menggunakan neraca  digital.  Umbi  yang  telah  dipilah,  dicuci hingga  bersih  dan  ditiriskan  hingga  kering. Selanjutnya  umbi  direndam  dalam  larutan fungisida  selama  3  detik  untuk  menghindari serangan  jamur,  kemudian  ditiriskan  hingga kering.
Rancangan penelitian. Penelitian menggunakan  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL) faktorial  dengan  3  faktor  perlakuan.  Faktor pertama adalah umbi (A) yang terdiri dari 2 taraf, yaitu umbi utuh (A1) dan umbi irisan (A2), faktor kedua  yaitu  giberelin  GA 3 (B)  yang  terdiri  dari  4 taraf (0, 50, 100, 200 ppm) dan faktor ketiga yaitu sitokinin BAP (C) yang terdiri dari 4 taraf (0, 50, 100, 200 ppm). Terdapat 32 kombinasi perlakuan (Tabel  1).  Setiap  kombinasi  perlakuan  diulang  5 kali sehingga diperoleh 160 satuan percobaan.

## Tabel 1. Variasi perlakuan
Umbi (A) GA 3 (B) (ppm) BAP (C) (ppm) Umbi utuh (A1) B0
C0 C50
C100 C200 B50 C0 C50 C100 C200 B100 C0 C50 C100 C200 B200 C0 C50 C100 C200 Umbi irisan (A2) B0 C0
C50 C100 C200 B50 C0 C50 C100 C200 B100 C0 C50 C100 C200 B200 C0 C50 C100 C200
Pemecahan  dormansi  umbi  kentang. Umbi yang telah direndam fungisida selanjutnya dipisah menjadi  dua  bagian,  yaitu  umbi  utuh  dan  irisan. Umbi  diiris  menggunakan cutter yang  telah
disterilisasi.  Pengirisan  dilakukan  secara  vertikal sehingga dihasilkan dua bagian umbi yang masing- masing  memiliki  bagian  apikal  dan  bagian  basal. Umbi  yang  telah  diiris  maupun  umbi  utuh direndam  dalam  larutan  GA 3 tunggal,  BAP tunggal, maupun kombinasi GA 3 dan BAP sesuai kombinasi perlakuan. Perlakuan tanpa penambahan  ZPT  (kontrol)  dilakukan  dengan merendam  umbi  dalam  akuades.  Perendaman dilakukan  selama  30  menit.  Umbi  kemudian ditiriskan  hingga  kering.  Selanjutnya  umbi diletakkan  di  dalam  gelas  plastik  berisi  kapas kering dan ditutup menggunakan tutup gelas. Gelas plastik  yang  berisi  kentang  tersebut  disimpan dalam ruang gelap pada suhu ruang selama 59 hari.
Parameter yang diamati. Pengamatan meliputi  waktu  muncul  tunas,  akhir  masa dormansi, jumlah tunas yang dihasilkan umbi, dan panjang tunas. Waktu muncul tunas diamati setiap hari.  Umbi  yang  dianggap  bertunas  adalah  umbi yang  memiliki  panjang  tunas  minimal  2  mm. Persentase umbi bertunas diamati setiap hari dari 0 hari  setelah  perlakuan  (HSP)  hingga  pada  setiap perlakuan terdapat umbi yang memunculkan tunas dan selanjutnya pengamatan dilakukan setiap satu minggu  sekali.  Dormansi  dianggap  berakhir apabila terdapat umbi bertunas minimal 80% pada setiap  perlakuan.  Persentase  umbi  bertunas dihitung dengan rumus (1) berikut:
% 𝑢𝑚𝑏𝑖 𝑏𝑒𝑟𝑡𝑢𝑛𝑎𝑠 = 𝑗𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑢𝑚𝑏𝑖 𝑏𝑒𝑟𝑡𝑢𝑛𝑎𝑠 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑢𝑚𝑏𝑖 𝑥100% ….. (1)
Panjang tunas diukur dari pangkal hingga ujung tunas.  Pengukuran  dilakukan  seminggu  sekali selama 59 HSP. Jumlah tunas yang dihasilkan per satuan  percobaan  (sp)  dihitung  dengan  rumus  (2) berikut:
% 𝑡𝑢𝑛𝑎𝑠 𝑝𝑒𝑟 𝑠𝑝  = jumlah tunas per sp total mata tunas per sp 𝑥100% ...... (2)
Analisis data. Data hasil pengamatan dianalisis dengan Analysis of Variance ( ANOVA ) atau Uji F, Uji  T  dan  Uji  Duncan  menggunakan software SPSS.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Waktu  muncul  tunas  pada  umbi  kentang. Berdasarkan analisis menggunakan Uji F (P<0,05), diperoleh bahwa waktu muncul tunas dipengaruhi oleh  umbi  utuh  atau  irisan    (A)  dan  perendaman pada  GA 3 tunggal  (B).  Berdasarkan  uji  T,  umbi utuh dan umbi yang diiris memiliki perbedaan yang signifikan  terhadap  waktu  muncul  tunas.  Umbi irisan  (A2)  rata-rata  mampu  memunculkan  tunas lebih  cepat  secara  signifikan  (10  HSP)  dibanding umbi utuh (A1) (16 HSP) (Gambar 1).
Gambar 1. Waktu muncul  tunas pada  umbi  utuh (A1) dan irisan (A2)
Pengirisan  umbi  mempercepat  pemecahan dormansi pada umbi kentang. Melalui pengirisan, proses respirasi dan sintesis RNA maupun protein pada  umbi  akan  meningkat  sebagai  salah  satu upaya penyembuhan luka. Penyembuhan luka pada permukaan  potongan  umbi  kentang  dapat  terjadi apabila terdapat suhu yang cukup hangat, kondisi lingkungan yang lembab, dan ketersediaan oksigen terpenuhi.  Respirasi  merupakan  respon  utama protoplasma  terhadap  rangsangan  kontak  sel-sel umbi  dengan  oksigen  dari  udara.  Selain  itu produksi  CO 2 pada  umbi  yang  mengalami  luka akan  lebih  tinggi  sebagai  bukti  bahwa  terjadi peningkatan  respirasi  pada  umbi  yang  terluka. Selanjutnya  bagian  yang  luka  akan  tertutupi  oleh lapisan  penutup  dan  kambium  gabus  akan meregenerasi menghasilkan lapisan baru. Pengirisan  umbi  kentang  mampu  mempercepat pertumbuhan tunas melalui pemecahan dominansi apikal, sehingga tunas baru pada bagian lateral dan basal  akan  lebih  banyak  dan  lebih  cepat  tumbuh setelah umbi diiris [10]. Selain itu pengirisan umbi mampu membuat larutan ZPT eksogen lebih cepat terserap  oleh  jaringan  kentang  karena  jaringan periderm  atau  kulit  akan  hilang  ketika  umbi kentang  diiris.  Jaringan  periderm  ini  terbentuk secara  sempurna  pada  umbi  kentang  yang  telah dewasa [14].
Perendaman  umbi  pada  GA3  tunggal  mampu memunculkan  tunas  lebih  cepat  secara  signifikan (10  –  13  HSP)  dibanding  kontrol  (perendaman dalam  akuades)  (17  HSP)  (Gambar  2).  Perlakuan GA 3 tunggal  50  ppm  dan  100  ppm  tidak  berbeda nyata  dalam  memunculkan  tunas  pada  umbi kentang  yaitu  pada  10  HSP.  Umbi  kentang  yang diberi  perlakuan  GA 3 dengan  konsentrasi  yang lebih  tinggi  yaitu  200  ppm  rata-rata  cenderung memunculkan  tunas  lebih  lambat  yaitu  pada  13 HSP.
Gambar  2. Pengaruh  konsentrasi  GA 3 terhadap waktu muncul tunas
Giberelin  (GA 3 )  merupakan  hormon  yang mampu  memicu  aktivitas  enzim-enzim  hidrolitik seperti α-amilase yang mampu menghidrolisis pati menjadi glukosa sebagai cadangan makanan akibat stimulasi  respirasi.  Glukosa  kemudian  dipecah menjadi  piruvat  dan  melalui  siklus  krebs  akan menghasilkan energi dalam bentuk ATP. Energi ini mampu berperan dalam metabolisme umbi kentang sehingga mampu mempercepat kemunculan tunas pada umbi kentang. Keberadaan giberelin endogen berperan penting dalam pemecahan dormansi umbi kentang.  Kadar  giberelin  endogen  sangat  rendah ketika  umbi  kentang  berada  pada  fase  dormansi, namun  saat  dormansi  mendekati  akhir,  kadar giberelin  endogen  akan  meningkat  [15].  Selain giberelin endogen, aplikasi giberelin eksogen juga diperlukan  untuk  mempercepat  munculnya  tunas dengan meningkatkan sintesis RNA dan DNA [9].
Akhir periode dormansi. Dormansi pada umbi kentang  dianggap  telah  selesai  apabila  minimal 80%  umbi  telah  bertunas  [16].  Nilai  80%  umbi bertunas  disebut  sebagai  daya  berkecambah  atau daya  tumbuh.  Daya  kecambah  yang  dianggap tinggi  minimal  pada  80%.  Oleh  karena  itu,  umbi yang  berhasil  menumbuhkan  tunas  minimal  80% pada  tiap  perlakuan  dianggap  masa  dormansinya telah berakhir.
Waktu paling cepat yang diperlukan umbi utuh maupun irisan  untuk  mematahkan dormansi  yaitu 7 HSP (Gambar 3). Akhir periode dormansi pada 7 HSP diperoleh pada umbi utuh yang direndam GA 3 50  ppm  (B50C0)  dan  GA 3 200  ppm  (B200C0), serta  pada  umbi  irisan  yang  direndam  dengan kombinasi  GA 3 50  ppm  dan  BAP  50  ppm (B50C50). Meskipun demikian, secara umum umbi utuh  yang  direndam  dalam  larutan  GA 3, BAP, maupun  kombinasi  GA 3 dan  BAP  cenderung memerlukan waktu lebih lama untuk memecahkan dormansi daripada irisan. Waktu paling lama yang diperlukan  umbi  utuh  untuk  mengakhiri  masa dormansinya  adalah  59  HSP  pada  BAP  200  ppm (B0C200).  Sedangkan  pada  umbi  irisan,  waktu paling lama untuk mengakhiri masa dormansi yaitu 24 HSP pada BAP 50 ppm (B0C50).
16 a 10 b 0 5 10 15 20 25 30 35 A1 A2 w ak tu m u n cu l tu n as (HSP ) Perlakuan 0 5 10 15 20 25 30 35 40 0 50 100 200 w ak tu m u n cu l tu n as (HSP ) GA 3 (ppm) 17c 10a 10a 13ab
Gambar  3. Pengaruh  perendaman  umbi  pada larutan  GA 3 (B)  dan  BAP  (C)  terhadap  akhir periode dormansi umbi kentang
Umbi  utuh  yang  direndam dalam  larutan  GA 3, BAP, maupun kombinasi GA 3 dan BAP cenderung memerlukan waktu lebih lama untuk memecahkan dormansi  daripada  umbi  yang  diiris  menjadi  2 bagian  dan  diberikan  perlakuan  yang  sama.  .  Hal ini karena permukaan irisan dapat membantu ZPT lebih  mudah  terserap  oleh  umbi  sehingga  dapat mempercepat pematahan dormansi. Pada penelitian ini umbi kontrol memerlukan waktu 38 HSP untuk mengakhiri masa dormansi, sedangkan waktu  normal  yang  diperlukan  umbi  kentang varietas granola untuk menumbuhkan tunas adalah 3-4 bulan. Tunas pada umbi kontrol yang tumbuh lebih cepat daripada umbi kentang pada umumnya kemungkinan  terjadi  akibat  penyimpanan  umbi dalam wadah tertutup di ruang gelap sehingga suhu di sekitar umbi lebih hangat daripada suhu normal. Pertumbuhan tunas umbi kentang dapat dipercepat menggunakan beberapa cara diantaranya penambahan ZPT, thiourea , ethanol , penyimpanan umbi  pada  tempat  gelap,  dan  penyimpanan  umbi pada  suhu  hangat  [7].  Meskipun  demikian  perlu dilakukan  penelitian  lebih  lanjut  terkait  pengaruh suhu  dan  intensitas  cahaya  terhadap  pemecahan dormansi umbi kentang.
Pengamatan dan penghitungan persentase umbi bertunas dilakukan setiap minggu untuk mengetahui respon waktu muncul tunas pada setiap perlakuan.  Pada  3  HSP  seluruh  umbi  utuh  belum menunjukkan  adanya  kemunculan  tunas  (Gambar 4). Pada 10 HSP umbi utuh pada seluruh perlakuan telah  bertunas,  namun  pada  setiap  perlakuan persentase umbi bertunas berbeda-beda. Prosentase  umbi  bertunas  pada  BAP  50  ppm  dan umbi  tanpa  perlakuan  (kontrol)  hanya  20%.  Pada perlakuan  GA 3 50  ppm,  GA 3 200  ppm,  serta kombinasi GA 3 100 ppm dan BAP 100 ppm umbi bertunas  mencapai  100%.    Sampai  hari  terakhir
pengamatan, ternyata belum semua umbi berhasil bertunas. Umbi utuh yang direndam BAP 50 ppm serta  kombinasi  GA 3 100  ppm  dan  BAP  50  ppm hanya mampu memunculkan tunas sebanyak 80%. Umbi  tanpa  perlakuan  (kontrol)  merupakan  umbi yang  peningkatan  persentase  umbinya  paling lambat  daripada  umbi  lainnya.  Hal  ini  dapat dibuktikan dari persentase kemunculan tunas umbi kontrol  (Gambar  4,  A1B0C0)  pada  17  HSP,  24 HSP, dan 31 HSP tetap pada angka 40% dan tidak mengalami  kenaikan.  Meskipun  umbi  kontrol kemunculan  tunasnya  lambat,  namun  berhasil memunculkan tunas 100% pada 52 HSP (Gambar 4).
Gambar  4. Persentase  umbi  bertunas  pada  umbi utuh
Pada  3  HSP  umbi  irisan  juga  belum  ada  yang berhasil bertunas (Gambar 5). Pada 10 HSP umbi irisan  pada  seluruh  perlakuan  telah  bertunas, namun  pada  setiap  perlakuan  persentase  umbi bertunas  berbeda-beda.  Persentase  kemunculan tunas terendah pada umbi irisan diperoleh/teramati pada  10  HSP  yaitu  pada  perlakuan  BAP  50  ppm sebesar  20%.  Kemunculan  100%  tunas  pada  10 HSP diperoleh pada perlakuan BAP 100 ppm, BAP 200  ppm,  kombinasi  GA 3 50  ppm  dan  BAP  200 ppm, kombinasi GA 3 100 ppm dan BAP 50 ppm, kombinasi    GA 3 100  ppm  dan  BAP  100  ppm, kombinasi  GA 3 100  ppm  dan  BAP  200  ppm, kombinasi  GA 3 200  ppm  dan  BAP  50  ppm, kombinasi GA 3 200 ppm dan BAP 100 ppm, serta kombinasi GA 3 200 ppm dan BAP 200 ppm. Umbi yang direndam BAP tunggal 50 ppm menunjukkan kemunculan  tunas  paling  lambat  daripada  umbi pada  perlakuan  lainnya  karena  hingga  17  HSP, persentase kemunculan tunasnya tetap lebih rendah dibandingkan  perlakuan  lainnya.  Pada  31  HSP umbi yang direndam BAP tunggal 50 ppm berhasil memunculkan  tunas  hingga  100%.  Seluruh  umbi irisan  mampu  memecahkan  dormansi  atau memunculkan  minimal  80%  tunas  pada  38  HSP.
38 45 31 59 7 10 17 24 24 8 8 31 7 31 10 38 9 24 8 8 17 7 8 9 8 9 9 10 17 9 9 9 0 10 20 30 40 50 60 70 C0 C5 0 C1 0 0 C2 0 0 C0 C5 0 C1 0 0 C2 0 0 C0 C5 0 C1 0 0 C2 0 0 C0 C5 0 C1 0 0 C2 0 0 B0 B50 B100 B200 ak h ir p erio d e d o rm an si ( HSP ) kombinasi larutan perendaman Umbi utuh Umbi irisan 0 20 40 60 80 100 120 3 1 0 1 7 2 4 3 1 3 8 4 5 5 2 5 9 p erse n tas e u m b i b ertu n as (% ) waktu (HSP) A1 B0 C0 A1 B0 C50
A1 B0 C100 A1 B0 C200 A1 B50 C0 A1 B50 C50 A1 B50 C100 A1 B50 C200 A1 B100 C0 A1 B100 C50 A1 B100 C100 A1 B100 C200 A1 B200 C0 A1 B200 C50 A1 B200 C100 A1 B200 C200
Hal  ini  menunjukkan  bahwa  umbi  irisan  yang direndam  dalam  larutan  GA 3 maupun  BAP cenderung  memiliki  keberhasilan  umbi  bertunas lebih  tinggi  dan  lebih  cepat  daripada  umbi  utuh yang  direndam  dalam  larutan  GA 3 maupun  BAP. Meskipun demikian pada hari terakhir pengamatan,  masih  terdapat  umbi  yang  belum memunculkan tunas hingga 100 % yaitu pada umbi irisan  yang  tidak  direndam  dalam  larutan  GA 3 maupun BAP.
Gambar  5. Persentase  umbi  bertunas  pada  umbi irisan
Jumlah  tunas  yang  dihasilkan  umbi. Berdasarkan uji T didapatkan hasil bahwa rata-rata jumlah  tunas  yang  dihasilkan  umbi  utuh  berbeda secara signifikan dengan umbi irisan. Pada kentang varietas granola umbi  utuh  memiliki  6-15  mata tunas,  sedangkan  umbi  iris  memiliki  3-7  mata tunas.  Berdasarkan  pengamatan  yang  telah dilakukan  pada  59  HSP,  tunas  yang  muncul  per satuan percobaan (sp) pada umbi irisan (A2) relatif lebih  banyak  (66,  9%)  daripada  umbi  utuh  (A1) (34,7%).
Gambar  6. Persentase  tunas  muncul  tiap  satuan percobaan  pada  umbi  utuh  (A1)  dan  umbi  irisan (A2)
Jumlah  tunas  yang  muncul  tiap  satuan percobaan berkaitan dengan jumlah mata tunas tiap umbi  yang  berhasil  tumbuh  dan  pecahnya dominansi  apikal.  Terjadinya  dominansi  apikal mampu  menghambat  tunas-tunas  lateral  untuk tumbuh karena terdapat hormon IAA yang berlebih pada bagian apikal umbi sehingga meskipun mata tunas  lateral  pada  umbi  terbilang  banyak,  tunas yang  berhasil  tumbuh  hanya  tunas  pada  bagian apikal.    Dominansi  apikal  dapat  terjadi  setelah umbi  menyelesaikan  masa  dormansinya  yang ditandai dengan umbi mulai bertunas. Irisan pada umbi  dapat  menghentikan  dominansi  apikal  dan memicu  tunas-tunas  lateral  untuk  tumbuh, sehingga jumlah tunas yang tumbuh akan semakin banyak [10].
Umbi  utuh  dan  irisan  memberikan  hasil  yang berbeda terhadap jumlah dan morfologi tunas yang dihasilkan.  Pada  umur  pengamatan  yang  sama tunas pada umbi utuh banyak tumbuh pada bagian apikalnya  dan  tampak  lebih  kokoh  namun ukurannya  tidak  cukup  panjang  (Gambar  7A). Adanya  dominansi  apikal  pada  umbi  utuh menyebabkan  mata  tunas  pada  bagian  lateral terhambat  untuk  tumbuh.  Sedangkan  tunas  pada umbi  irisan  tunas  tumbuh  pada  hampir  seluruh bagian  dan  berukuran  panjang,  namun  tidak sekokoh tunas pada umbi utuh (Gambar 7B).
Gambar  7. Morfologi  umbi  kentang  bertunas. A. umbi utuh; B. umbi irisan
Dominansi  apikal  dapat  dihentikan  melalui perlakuan irisan sebab pada umbi irisan tunas yang tumbuh  tidak  hanya  pada  bagian  apikal.  Umbi irisan menunjukkan morfologi yang kurang kokoh sebab  jumlah  cadangan  makanan  akan  berkurang setelah  proses  pengirisan,  sehingga  cadangan makanan  harus  dibagi  kepada  seluruh  tunas  baru yang jumlahnya banyak sehingga tunas tidak akan sekokoh  tunas  pada  umbi  yang  mengalami dominansi  apikal  [17].  Berdasarkan  hal  tersebut diketahui  bahwa  perlakuan  irisan  pada  umbi kentang varietas granola dapat menghasilkan tunas lebih banyak meskipun tunas yang dihasilkan tidak sekokoh tunas pada umbi utuh.
Panjang tunas pada umbi kentang. Berdasarkan  analisis  yang  telah  dilakukan menggunakan  Uji  F  dengan  P<0,05  diketahui
0 20 40 60 80 100 120 3 1 0 1 7 2 4 3 1 3 8 4 5 5 2 5 9 p erse n tas e u m b i b ertu n as (% ) waktu (HSP) A2 B0 C0 A2 B0 C50
A2 B0 C100 A2 B0 C200 A2 B50 C0 A2 B50 C50 A2 B50 C100 A2 B50 C200 A2 B100 C0 A2 B100 C50 A2 B100 C100 A2 B100 C200 A2 B200 C0 A2 B200 C50
A2 B200 C100 A2 B200 C200 34.7 a 66.9 b 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 A1 A2 tu n as m u n cu l p er s p ( %)
Perlakuan
bahwa  faktor  yang  mempengaruhi  panjang  tunas secara  signifikan  antara  lain  irisan    (A),  GA 3 tunggal (B), BAP tunggal (C), interaksi irisan dan GA 3 , interaksi irisan dan BAP serta interaksi GA 3 dan  BAP.  Panjang  tunas  dipengaruhi  secara signifikan oleh interaksi umbi dengan konsentrasi GA 3 . Pada 59 HSP panjang tunas yang dihasilkan pada umbi utuh maupun irisan berkisar 3,1 – 19,4 mm.  Semua  umbi  utuh  yang  direndam  GA 3 pada semua  konsentrasi,  menghasilkan  panjang  tunas yang  tidak  berbeda  signifikan.  Perendaman  umbi irisan  pada  GA 3 menghasilkan  tunas  yang  lebih panjang  secara  signifikan  (16,8  –  19,4  mm) dibanding  kontrol  (6,1  2,8  mm).  Panjang  tunas cenderung meningkat pada konsentrasi GA 3 50 dan 100  ppm masing-masing mencapai  16,8  dan  19,4 mm.  Namun  pada  konsentrasi  GA 3 yang  lebih tinggi  (200  ppm)  panjang  tunas  yang  dihasilkan cenderung  menurun  menjadi  17,5  mm.  Dinamika yang  sama  juga  ditunjukkan  pada  umbi  utuh dengan  panjang  tunas  pada  perendaman  GA 3 50 ppm (4,3 mm) dan 100 ppm (4,5 mm),  sedangkan perendaman GA 3 200 ppm, tunas cenderung lebih pendek  (3,5  mm).  Panjang  tunas  yang  dihasilkan umbi  utuh  dan  irisan  tidak  berbeda  nyata  pada kontrol  (perendaman  dalam  akuades),  namun perendaman umbi irisan pada GA 3 (50 – 200 ppm) menghasilkan  tunas  yang  lebih  panjang  secara signifikan dibanding umbi utuh (Gambar 8).
Gambar 8. Panjang tunas umbi utuh dan irisan
Giberelin  merupakan  hormon  yang  berperan penting  dalam  pemecahan  dormansi  umbi  dan pertumbuhan  tunas.  Kentang  yang  berada  dalam periode  dormansi  memiliki  kadar  giberelin endogen  yang  rendah,  sebaliknya  saat  mendekati berakhirnya  periode  dormansi,  kadar  giberelin akan  meningkat  dan  dapat  memicu  pertumbuhan tunas  sebagai  tanda  berakhirnya  masa  dormansi. Perendaman  umbi  kentang  pada  larutan  giberelin mampu  meningkatkan  panjang  tunas  sekaligus mempercepat penghentian masa dormansi sehingga pada kombinasi perlakuan irisan dan GA 3
dapat meningkatkan panjang tunas [18]. Selain itu respirasi  pada  umbi  irisan  yang  mendapatkan perlakuan GA juga lebih tinggi daripada umbi utuh yang  hanya  mendapatkan  perlakuan  GA  sebagai upaya penyembuhan luka irisan [14].
Panjang tunas juga dipengaruhi secara signifikan oleh interaksi antara umbi dengan BAP. Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  tunas  pada umbi  irisan  yang  direndam  dalam  larutan  BAP lebih panjang dibandingkan tunas pada umbi utuh. Panjang  tunas  dipengaruhi  secara  signifikan  oleh interaksi  umbi  dengan  konsentrasi  BAP.  Pada  59 HSP panjang tunas yang dihasilkan pada umbi utuh maupun irisan berkisar 3,2 – 18,3 mm. Semua umbi utuh yang direndam BAP pada semua konsentrasi, menghasilkan  panjang  tunas  yang  tidak  berbeda signifikan.  Umbi  irisan  pada  perendaman  BAP menghasilkan tunas yang lebih pendek (12,2 – 16,0 mm) dibanding kontrol (18,3  10,4 mm). Panjang tunas pada umbi irisan cenderung meningkat pada konsentrasi  BAP  50  sampai  100  ppm  masing- masing  mencapai  13,3  mm  dan  16,0  mm,  namun pada konsentrasi BAP yang lebih tinggi (200 ppm) panjang tunas yang dihasilkan cenderung menurun menjadi 12,2 mm. Pada umbi utuh semakin tinggi konsentrasi  BAP  panjang  tunas  juga  semakin meningkat. Panjang tunas pada BAP 50 ppm, 100 ppm,  dan  200 ppm  berturut-turut  adalah  3,2 mm; 3,6 mm; 3,9 mm (Gambar 9).
Gambar 9. Panjang tunas umbi utuh dan irisan
BAP  berperan  dalam  merangsang  pembelahan sel  dan  pematahan  dormansi.  Hal  ini  berbeda dengan  penelitian  ini  karena  BAP  tunggal  tidak berpengaruh  dalam  pemecahan  dormansi maupun pemanjangan  tunas.  Oleh  karena  itu  perlu dilakukan  penelitian  lebih  lanjut  terkait  jenis sitokinin  yang  digunakan  dan  lama  perendaman umbi  pada  sitokinin  dalam  pemecahan  dormansi dan pertumbuhan tunas umbi kentang.
Panjang  tunas  juga  dipengaruhi  oleh  interaksi antara  GA 3 dan  BAP.  Umbi  utuh  maupun  irisan yang direndam dalam BAP tunggal menghasilkan
3.1a 4.3a 4.5a 3.5a 6.1a 16.8b 19.4b 17.5b 0 5 10 15 20 25 30 35 0 50 100 200 p an jan g tu n as (m m ) konsentrasi GA3 (ppm) Umbi utuh Umbi irisan 4.7a 3.2a 3.6a 3.9a 18.3c 13.3b 16.0bc 12.2b 0 5 10 15 20 25 30 35 0 50 100 200 p an jan g tu n as (m m ) konsentrasi BAP (ppm) Umbi utuh Umbi irisan
tunas  yang  paling  pendek,  namun  semakin  tinggi konsentrasi BAP, tunas yang dihasilkan cenderung semakin  panjang.  Rata-rata  panjang  tunas  pada umbi  utuh  maupun  irisan  yang  direndam  BAP tunggal 50, 100, dan 200 ppm berturut-turut adalah 4,0;  4,8;  dan  6,0  mm.  Umbi  utuh  maupun  irisan yang  direndam  GA 3 tunggal  50  dan  100  ppm mampu  menghasilkan  tunas  paling  panjang, masing-masing mencapai 13,5 dan 15,8 mm. Umbi utuh  maupun  irisan  yang  direndam  dalam kombinasi GA 3 dan BAP cenderung menghasilkan tunas  yang  lebih  pendek  dibanding  GA 3 tunggal. GA 3 50  ppm  yang  dikombinasikan  dengan  BAP yang konsentrasinya semakin meningkat menghasilkan  tunas  yang  semakin  pendek. Sedangkan pada GA 3 100 ppm dan 200 ppm, setiap kenaikan  konsentrasi  BAP  menunjukkan  hasil yang beragam.  Perlakuan paling baik yang dapat menghasilkan  tunas  paling  panjang  dari  seluruh perlakuan  adalah  GA 3 tunggal  100  ppm  dengan panjang tunas 15,8 mm (Gambar 10).
Gambar  10 .  Rata-rata  panjang  tunas  pada  umbi utuh dan irisan
Pada  penelitian  ini  pemberian  BAP  tunggal tidak  berpengaruh  nyata  terhadap  panjang  tunas karena  diduga masih  terdapat  umbi  kentang  yang berada  pada  fase  dormansi  dan  kadar  GA  masih rendah. Rendahnya kadar GA menjadi penghambat dalam  proses  asimilasi  untuk  pertumbuhan. Sitokinin  tidak  berpengaruh  nyata  terhadap pertumbuhan  tunas  yang  lebih  lanjut  [11]. Sitokinin  memang  termasuk  dalam  ZPT  yang berperan dalam pembelahan sel, namun pembelahan  sel  tidak  selalu  ditunjukkan  melalui pemanjangan sel [19].

## KESIMPULAN
Umbi  irisan  mampu  memecahkan  dormansi lebih  cepat  (10  HSP)  dibanding  umbi  utuh  (16 HSP). Umbi yang direndam pada GA 3 50 ppm dan GA 3 100 ppm mampu bertunas lebih cepat yaitu 10 HSP.    Jumlah  tunas  yang  dihasilkan  tiap  satuan
percobaan hingga  59  HSP pada  umbi  irisan lebih banyak  (66,9%)  dibanding  umbi  utuh  (34,7%). Umbi  irisan  yang  direndam  dalam  GA 3 maupun BAP  mampu  menumbuhkan  tunas  lebih  panjang daripada  umbi  utuh  yang  direndam  larutan  GA 3 maupun  BAP.  Rata-rata  tunas  terpanjang  (19,4 mm)  pada  umbi  irisan  dihasilkan  pada  perlakuan perendaman dengan GA 3 tunggal 100 ppm.

## UCAPAN TERIMAKASIH
Penulis  mengucapkan  terimakasih  kepada Bapak  H.  Noto  sebagai  penyedia  benih  umbi kentang  untuk  penelitian  ini  serta  kepada  Bapak Uliyas  dan  Ibu  Ba’inah  yang  telah  menyediakan tempat  dan  fasilitas  untuk  pengerjaan  penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
[1] Prahardini,  PER,  Sudaryono  T,  Andri  K  B (2013)  Pengembangan  kentang  varietas
Granola  Kembang  di  Jawa  Timur.  Inovasi Hortikultura Pengungkit
Peningkatan Pendapatan Rakyat 65-77.
[2] Dinas  Pertanian  Kota  Batu  (2018)  Laporan akuntabilitas  kinerja  instansi  pemerintah. https://batukota.go.id/upload/sakip/disperta- LAKIP%202018.pdf.  Accessed:  November 2020.
[3] Karjadi A K (2017) Teknik perbanyakan cepat tanaman  kentang  ( Solanum  Tuberosum L ) .
Balai Penelitian Tanaman Sayuran, Bandung.
[4] Sastrahidayat  I  R  (2011)  Tanaman  kentang dan  pengendalian  hama  penyakitnya . UB Press, Malang.
[5] Wulandari A N, Heddy S, Suryanto A (2014)
Penggunaan bobot umbi bibit pada peningkatan hasil tanaman kentang ( Solanum tuberosum L.)  G3  dan  G4  varietas  Granola. Jurnal Produksi Tanaman 2(1): 65-72.
[6] Nyawade S (2018) Growing the  potato crop: the  unmistakable  easy  task.  International Potato Center 1-12.
[7] Nuraini A, Sumadi, Yuwariah Y, Rulistianti H (2019)  Pengaruh  suhu  penyimpanan  dan konsentrasi  sitokinin  terhadap  pematahan dormansi benih kentang ( Solanum tuberosum
L.) G 2. Jurnal Kultivasi 18(3): 997-982.
[8] Mani F, Bettaieb T, Doudech N, Hannachi C (2014)  Physiological  mechanisms  for  potato dormancy  release  and  sprouting:  a  review. African Crop Science Journal 22(2): 155-174
[9] Suttle J C (2004) Physiological regulation of potato tuber dormancy. Amer J of Potato Res 81: 253-262.
[10] Mustefa  G,  Mohammed  W,  Deschassa  N, Gelmesa  D  (2017)  Effects  of  different dormancy-breaking  and  storage  methods  on
3.7 4.0 4.8 6.0 13.5 11.3 9.1 8.2 15.8 9.4 11.8 10.7 12.9 8.4 13.5 7.2 0 5 10 15 20 25 30 35 C0 C 5 0 C 1 0 0 C 2 0 0 C0 C 5 0 C 1 0 0 C 2 0 0 C0 C 5 0 C 1 0 0 C 2 0 0 C0 C 5 0 C 1 0 0 C 2 0 0 B0 B50 B100 B200 p an jan g tu n as (m m ) kombinasi larutan perendaman
seed tuber sprouting and subsequent yield of two  potato  ( Solanum  tuberosum L.)  varieties.
Open Agriculture 2: 220-229.
[11] Rossouw J A (2008) Effect of cytokinin and gibberellin  on  potato  tuber  dormancy. University of Pretoria, Pretoria.
[12] Deligios  P  A,  Rapposelli  E,  Mameli  M  G, Baghino  L,  Mallica  G  M,  Ledda  L  (2019) Effects of physical mechanical and hormonal treatments  of  seed-tubers  on  bud  dormancy and  plan  productivity.  Agronomy 10(33):1-
19.
[13] Ratnasari  T (2010)  Kajian  pembelahan umbi benih  dan  perendaman  dalam  giberelin  pada pertumbuhan  dan  hasil  tanaman  kentang ( Solanum  tuberosum L.).  Skripsi.  Fakultas Pertanian. Universitas Sebelas Maret, Surakarta.
[14] Alexopoulos AA, Aivalakis G, Akoumianakis K  A,  dan  Passam  H  C  (2008)  Effect  of gibberellic acid on the duration of dormancy of  potato  tubers  produced  by  plants  derived from  true  potato  seed.  Postharvest  Biology and Technology 49: 424-430.
[15] Degebasa  A  C  (2012)  Gibberellic  acid  for breaking dormancy in potato sprout induction. Lap Lambert Academic Publishing, Saarbrucker.
[16] Muchiri  PD,  Gathungu  GK,  Njogu  MK,
Nyankanga RO, Ambuko J, Landeo JA (2015)
Optimization  of  seed  potato  ( Solanum
tuberosum L.) tuber dormancy and sprouting capacity  through  integrated  gibberellic  acid and  benzylaminopurine  application.  Journal of Agriculture Ecology Research International 4(4): 188-198.
[17] Diop P, Sylla E S, Diatte M, Labou B, Diarra K  (2019)  Effect  of  cut  tubers  and  pre- germination on potato tuber yield. Int.J.Biol.Chem 13(7): 3157-3163.
[18] Nasiruddin  M,  Khatun  R,  Haydar  F  M  A, Imtiaj A, Alam M F (2016) Effect of physical and  chemical  treatments  on  sprouting  of dormant  potato  tubers.  Plant  Environtment Development 5(2): 24-27.
[19] Traas J, Courseau I B (2005) Cell proliferation patterns  at  the  shoot  apical  meristem.  Plant Biol 8: 587-592.