DOI: https://doi.org/10.36423/agroscript.v4i1.972
P-ISSN (2685-9505) E-ISSN (2685-9491)
URL: https://e-journal.unper.ac.id/index.php/agroscript
PENGHAMBATAN Gliocladium sp. Cordo. TERHADAP Phytophthora capsici Leonian. PENYEBAB PENYAKIT BUSUK PANGKAL BATANG LADA SERTA BENTUK FORMULASINYA
INHIBITION OF Gliocladium sp. Cordo. AGAINST Phytophthora capsici Leonian.

## CAUSES PEPPER ROT STEM DISEASE AND THE FORMULATION
Akhmad Faisal Malik, Romauli Siagian, Farriza Diyasti Direktorat Perlindungan Perkebunan, Direktorat Jenderal Perkebunan Kementerian Pertanian Gedung C Jl. RM. Harsono, Ragunan, Kec. Ps. Minggu, Kota Jakarta Selatan, Daerah Khusus Ibukota Jakarta 12550
Kata kunci: Biokompos Gliocladium Persentase Penghambatan Phytophthora ABSTRAK
Penyakit busuk pangkal batang (BPB) pada tanaman lada yang disebabkan cendawan Phytophthora  capsici merupakan  penyakit  penting  yang  dapat menyebabkan kehilangan hasil hingga 15% per tahun. Pemanfaatan agens hayati  merupakan  alternatif  pengendalian  penyakit  tanaman  yang  ramah lingkungan.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  menganalisis  kemampuan penghambatan Gliocladium sp.  terhadap P.  capsici secara in  vitro serta mengetahui  kemampuannya  sebagai  dekomposer . Metode  penelitian menggunakan metode dual culture antara Gliocladium sp. dengan P. capsici . Sementara itu, biokompos dibuat dengan bahan dasar serbuk gergaji-dedak dengan  perbandingan  3:2  untuk  mengetahui  kemampuan Gliocladium sp. sebagai dekomposer. Hasil penelitian menunjukkan bahwa Gliocladium sp. mampu  menghambat  pertumbuhan P.  capsici dengan  persentase penghambatan tertinggi sebesar 54,89% setelah lima hari inokulasi. Di sisi lain, Gliocladium juga mampu mendekomposisi dan tumbuh baik pada bahan organik berupa campuran serbuk gergaji-dedak.
Keywords: Biocompost Gliocladium Inhibition Percentage Phytophthora ABSTRACT
Pepper  rot  stem  which  caused  by Phytophthora  capsici is  an  important disease that cause yield losses up to 15% per year. Using of biological agents is  an  environmentally  friendly  alternative  to  plant  disease  control.  This study aimed to analyze the inhibition of Gliocladium sp. against P. capsici in vitro  and  the  ability  as  a  decomposer.  The  research  method  used  a  dual culture  method  between Gliocladium sp.  with P.  capsici .  Meanwhile, biocompost was made from sawdust-bran (3:2) to determine the ability of Gliocladium sp. as a  decomposer. The  results showed  that Gliocladium sp.
inhibit the growth of P. capsici with inhibition percentage up to 54.89% after five  days  of  inoculation.  On  the  other  hand, Gliocladium was  also  able  to decompose and grew well on organic matter of sawdust-bran.

## PENDAHULUAN
Lada ( Piper nigrum L.) merupakan salah satu komoditas penting tanaman perkebunan yang banyak dibudidayakan petani. Lebih dari 90% pertanaman lada diusahakan oleh rakyat
dari  total  luas  areal  198.703  ha  (Direktorat Jenderal  Perkebunan,  2019).  Keadaan  iklim dan  kondisi  geografis  yang  sesuai  dapat mendukung pertumbuhan dan perkembangan lada,  seperti  lada  putih  ( Munthok  white
pepper)  yang  dikembangkan  di  Provinsi Bangka  Belitung  dan  lada  hitam  di  Provinsi Lampung.  Lada  memiliki  potensi  pasar  yang sangat besar baik di dalam maupun luar negeri (ekspor),  namun  seringkali  dihadapkan dengan masalah penurunan produksi (Permatasari,  2015),  serta  rendahnya  mutu dan  kualitas  hasil  (Mayrowalni,  2013) sehingga  dapat  melemahkan  daya  saing industri lada di pasar global. Menurut Saefudin (2014), faktor yang menyebabkan rendahnya mutu dan produktivitas tanaman lada antara lain  banyaknya  tanaman  lada  usia  tua  dan rusak, alih fungsi lahan, penggunaan benih tak bersertifikat,  praktik  budidaya  konvensional, serta  gangguan  Organisme  Pengganggu Tumbuhan  (OPT).  Busuk  pangkal  batang (BPB)  merupakan salah  satu  penyakit  utama pada  tanaman  lada  yang  disebabkan  oleh cendawan Phytophthora capsici. Penyakit BPB dapat  menjangkit  tanaman  lada  pada  masa pembibitan, tanaman umur muda, sampai fase berbuah (Agussalim et al., 2017).
Pemanfaatan cendawan antagonis biokompos merupakan salah satu solusi yang dapat  diterapkan  untuk  mengendalikan penyakit  BPB  pada  tanaman  lada.  Selain ramah  lingkungan,  pemanfaatan  cendawan antagonis juga mendukung pertanian berkelanjutan ( sustainable agriculture ). Salah satu  cendawan  yang  dapat  berperan  sebagai antagonis  terhadap  patogen  tanaman  yaitu Gliocladium sp. (Rizal, 2017). Penelitian yang dilakukan  Soenartiningsih et  al. (2014) menunjukkan  bahwa Gliocladium dapat menekan  patogen  penyebab  busuk  pelepah
pada jagung hingga 53%. Selain praktis dalam aplikasinya, Gliocladium juga mudah diperbanyak pada media buatan yang murah dan mudah diperoleh.
Menurut  Dewi  &  Ahmad  (2021), Gliocladium sp.  juga  dapat  mendekomposisi limbah organik yang berasal dari sekam padi dan  kotoran  ternak  menjadi  kompos  yang bermutu. Biokompos berbahan aktif cendawan agens hayati sangat penting dalam implementasi  pengendalian  patogen  di lapangan.  Malik et  al. (2022)  melaporkan bahwa aplikasi kombinasi pupuk organik dan agens  hayati  dapat  menekan  patogen  lebih optimal. Pupuk dapat meningkatkan ketahanan  tanaman  terhadap  penyakit, sementara  itu  agens  hayati  dapat  menekan patogen.  Agens  hayati  memerlukan  bahan pembawa  yang  sesuai  agar  ketersediaan nutrisi  dan  kesesuaian  substrat  dapat terpenuhi ketika berada di lingkungan efikasi, sehingga  diperlukan  media/bahan  pembawa yang cocok sebelum Gliocladium diaplikasikan di lapangan.
Penelitian ini bertujuan untuk menganalisis  kemampuan  penghambatan Gliocladium sp.  terhadap P.  capsici secara in vitro serta  mengetahui  kemampuannya sebagai dekomposer.

## BAHAN DAN METODE

## A. Isolasi Phytophthora capsici
Isolat P.  capsici diisolasi  dari  daun terinfeksi  dengan  gejala  bercak  kecoklatan disertai renda di bagian tepinya jika diarahkan ke  cahaya.  Bercak  tersebut  dipotong  segi
empat  dengan  menyertakan  jaringan  sehat kemudian  ditanam  pada  media Water  Agar dan  diikunbasikan  selama  5-7  hari.  Koloni yang tumbuh diamati dengan mikroskop dari bawah cawan petri untuk memastikan adanya sporangium P.  capsici .  Selanjutnya P.  capsici dimurnikan  dan  dikulturkan  pada  media  V8 Juice Agar.
B. Isolasi Gliocladium sp.
Isolat Gliocladium sp. (produk kemasan dalam  bentuk  tepung)  diisolasi  dengan metode  pengenceran  bertingkat  ( serial dilution )  dan  ditumbuhkan  pada  media  PDA yang  ditambahkan  1%  antibiotik  kemudian diinkubasikan  selama  5-7  hari.  Koloni  yang tumbuh  diisolasi  dan  dikulturkan  kembali pada  media  PDA  hingga  diperoleh  biakan murni.
C. Uji Antagonis Uji antagonis dilakukan dengan
mengambil  koloni  cendawan P.  capsici dan Gliocladium sp.  yang  berumur  5  hari  dengan bor  gabus,  kemudian  menginokulasikannya pada media PDA yang telah ditambahkan 1% antibiotik  ( Tetracyclyne )  untuk  mencegah kontaminasi  bakteri. Gliocladium sp.  dan P. capsici diletakkan secara berhadapan dengan jarak  masing-masing  3  cm  kemudian diinkubasikan  selama  5-7  hari.  Sebagai pembanding,  dilakukan  penanaman  secara terpisah koloni Gliocladium sp. dan P. Capsici sebagai  kontrol.  Perlakuan  secara  rinci sebagai berikut:
G  : Gliocladium sp.
P : P. capsici
Gh  : Gliocladium sp. yang berhadapan
Ph  : P. capsici yang berhadapan Uji  antagonis  dilakukan  menggunakan Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL)  dengan  9 ulangan.  Data  yang  diperoleh  dianalisis menggunakan  uji  F,  dilanjutkan  dengan  Uji Beda Nyata Jujur (BNJ) pada tingkat kesalahan 5%.
1.

## Parameter
Parameter yang diamati meliputi:
a) Diameter koloni
Pengukuran  diameter  koloni  dilakukan dengan  menghitung  rerata  diameter  koloni Gliocladium sp.  dan P.  capsici yang  saling berhadapan serta koloni Gliocladium sp. dan P. capsici yang  tumbuh  secara  terpisah  pada media PDA (kontrol).
b) Tingkat penghambatan Tingkat penghambatan antagonis
Gliocladium sp.  terhadap P.  capsici menurut Amaria et. al . (2013) dihitung dengan rumus:
H = R1 − R2
R2 X 100%
Keterangan:
H  : Tingkat penghambatan antagonis (%)
R1  : Jari-jari koloni patogen kontrol (cm)
R2  : Jari-jari koloni patogen yang berhadapan dengan antagonis (cm).
Kategori tingkat penghambatan antagonis diklasifikasikan sebagai berikut. Kategori Nilai Tinggi 70-100% Sedang 40-69% Rendah 0-39 % 2. Waktu pengamatan Pengamatan  tingkat  penghambatan
Gliocladium sp.  terhadap P.  capsici dilakukan setiap 24 jam selama 5 hari.
D. Potensi  Formulasi Gliocladium dalam
Bentuk Biokompos
Formulasi  biokompos  terbuat  dari campuran serbuk gergaji-dedak sebanyak 5 kg (3:2)  yang  ditambahkan  serbuk  CaCO 3 0,5%.
Selanjutnya, media disterilkan dengan otoklaf pada  suhu  121 0 C  dengan  tekanan  15  Psi selama  30  menit.  Suspensi Gliocladium sebanyak 500  ml  (jumlah  konidia  10 7 /ml) diinokulasikan pada formulasi media tersebut hingga merata dan diinkubasikan selama 7-14 hari.  Pemanenan  biokompos  dilakukan  jika media  serbuk  gergaji-dedak  terdekomposisi sempurna  (berwarna  kehitaman)  kemudian diaduk  hingga  homogen  untuk  diuji  kembali jumlah konidianya.
Penghitungan konidia dilakukan dengan metode  pengenceran  bertingkat  ( serial dilution )  yaitu  menimbang  1  gram  formulasi ke  dalam  9  ml  air  destilasi,  kemudian dihomogenkan  dengan  menggunakan vortex mixer selama  3  menit.  Suspensi  tersebut diambil 1 ml dan diencerken kembali ke dalam 9 ml air steril pada tabung reaksi berikutnya. Demikian  seterusnya  hingga  diperoleh  seri pengenceran 10 -4 . Suspensi pada pengenceran terakhir  dihitung  dengan  menggunakan haemocytometer ,  kemudian  dihitung  dengan rumus  sesuai  SNI  Agens  pengendali  hayati menurut Badan Standardisasi Nasional (2014) berikut:
S = X L (mm 2 ) x t(mm)xd x 10 3
Keterangan :
S : Kerapatan konidium/ml
X  : Rerata jumlah konidium pada kotak a, b,
c, d, e
L : Luas kotak hitung 0,04 mm 2
T  : Kedalaman bidang hitung 0,1 mm D  : Faktor pengenceran
10 3 : Volume suspensi yang dihitung ( 1 ml = 10 3 mm 3 )

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## A. Diameter koloni dan antagonisme
Berdasarkan  hasil  pengamatan  hingga hari  terakhir,  laju  pertumbuhan Gliocladium sp. pada kontrol jauh lebih cepat daripada P. capsici yang  ditumbuhkan  secara  terpisah (Gambar 1)
Gambar 1. Grafik rerata pertumbuhan koloni masing-masing hingga pengamatan terakhir.
Hingga  pengamatan  terakhir  (5  hsi), rerata  diameter  koloni  tertinggi  diperoleh pada perlakuan Gliocladium sp. (G) sebesar 9 cm,  diikuti  secara  berturut-turut  oleh perlakuan Gliocladium sp.  yang  berhadapan (G*)  sebesar  7,35  cm, P.  capsici (P)  sebesar 4,18 cm, dan P. capsici yang berhadapan (P*) sebesar 2,52 cm. Hal ini menunjukkan bahwa Gliocladium sp. memiliki kemampuan tumbuh dan  penguasaan  tempat  yang  cepat dibandingkan P.  capsici, bahkan Gliocladium sp. yang tumbuh berhadapan dengan P. capsici
masih lebih cepat pertumbuhannya dibandingkan P.  capsici yang  tumbuh  tanpa
dihadapkan  dengan Gliocladium sp.  (Gambar 2). Menurut Soesanto (2013), Gliocladium sp. tumbuh  cukup  cepat  hingga  mencapai diameter  5-8  cm  dalam  waktu  5  hari  pada suhu 20 ° C. Jika dikulturkan pada media Potato Sucrose  Agar (PSA),  maka  teksturnya
berwarna  hijau  dan  tampak  seperti  berbulu pada permukannya. Gliocladium sp. merupakan cendawan tanah yang tersebar di berbagai jenis tanah.
Gambar 2. Perbedaan laju pertumbuhan Gliocladium sp. dan P. capsici setelah 5 hari inokulasi: a.
Pertumbuhan Gliocladium sp. dan P. capsici yang saling berhadapan; b. Pertumbuhan Gliocladium sp.; c. Pertumbuhan P. capsici.
Tingkat  penghambatan Gliocladium sp. terhadap P.  capsici sebesar  54,89%.  Ini menunjukkan bahwa Gliocladium sp. memiliki
daya  hambat  yang  cukup  tinggi  terhadap P. capsici (Tabel 1).
Tabel  1.  Hasil  uji  lanjut  diameter  koloni menggunakan  Uji  Beda  Nyata  Jujur (HSD) Perlakuan Rerata G 9,0000 a G* 7,3511 b P 4,1833 c P* 2,5167 d Keterangan: Angka yang diikuti oleh huruf yang berbeda pada kolom yang sama berbeda nyata pada taraf kesalahan 5%.
Gliocladium sp.  termasuk  dalam  jamur kelas  Deuteromycetes  dengan  ciri  konidia berwarna  hijau  dan  konidiofor  bersepta. Konidia  berbentuk  bulat  telur  pendek  dan memiliki  hifa  bersekat.  Menurut  Yulianto (2014),  beberapa  ciri  cendawan  antagonis memiliki  kemampuan  berkompetisi  dalam menyerap  nutrisi,  oksigen,  dan  penguasaan tempat tumbuh.
Mekanisme antagonistik dari Gliocladium sp.  terhadap  organisme  lain berupa mekanisme kompetisi, antibiosis, lisis, dan parasitisme (Rizal, 2017). Risthayeni et al.
(2018)  melaporkan  bahwa Gliocladium sp. memiliki  daya  hambat  yang  cukup  tinggi terhadap  cendawan  patogen  akibat  senyawa yang dihasilkan berupa toksin atau antifungal.
Mekanisme  lain  yaitu  mikoparastisme yang  melibatkan  proses  pelilitan  hifa Gliocladium terhadap P. capsici. Dalam proses mikoparasit, Gliocladium mempenetrasi  hifa inang untuk menyerap nutrisi. Menurut Hasan et  al. (2022)  peristiwa  mikoparasit  terjadi melalui  empat  tahap.  Pertama,  cendawan antagonis  tumbuh  mengikuti  pertumbuhan hifa  patogen  dan  mulai  merasakan  senyawa
yang  disekresikannya  kemudian  merespon sinyal-sinyal  kimiawi  serta  merangsang pertumbuhan  papila  di  ujung  hifa  antagonis. Tahap  selanjutnya,  hifa  antagonis  tumbuh menempel  pada  hifa  patogen  dan  mulai meregangkan  banyak  cabang  hifa.  Tahap ketiga  setelah  terjadi  pelekatan,  antagonis memproduksi  struktur  khusus  berupa apresoria  untuk  menembus  hifa  patogen sehingga  sel-sel  patogen  terdegradasi  secara bertahap.  Selain  secara  fisik,  antagonis  juga merusak  dinding  sel  patogen  melalui metabolit sekunder yang dihasilkannya yaitu berupa  enzim  (antara  lain  enzim  kitinase, selulase,  dan  glukanase)  serta  toksin  (antara lain gliovirin). Tahap terakhir, hifa  antagonis mengoloni  hifa  patogen  secara  masif  diikuti penyerapan  nutrisi  yang  berasal  dari  hifa patogen. Dalam tahap ini, cendawan antagonis tumbuh  dan  berkembang  baik,  sementara patogen  mengalami  penurunan  tugiditas  sel akibat kebocoran sitoplasma.
Gambar 3. Perkembangan persentase penghambatan Gliocladium sp. terhadap P. capsici hinga hari ke-5 setelah inokulasi.
Hasil  pengamatan  hingga  hari  terakhir memperlihatkan bahwa penghambatan Gliocladium terhadap P.  capsici berlangsung secara bertahap sesuai dengan laju pertumbuhannya  (Gambar  3).  Hal  ini  sesuai
dengan pendapat Soenartiningsih et al. (2014) bahwa  cendawan  antagonis  tidak  langsung melumpuhkan  cendawan  patogen,  tetapi secara bertahap menekan perkembangannya.
Sementara  itu,  menurut  Rizal  (2017), miselia Gliocladium sp.  sudah  dapat  tumbuh pada  hari  ke-2  pada  miselia  cendawan patogen.  Mulanya,  miselia Gliocladium yang berwarna putih kehijauan kemudian berkembang  menjadi  warna  hijau  dengan kumpulan  miselia  halus.  Sedangkan  miselia patogen  berubah  warna  menjadi  agak  gelap akibat terganggunya fungsi fisiologis. Semakin tinggi  konsentrasi Gliocladium sp.  yang diaplikasikan, maka semakin tinggi dan cepat laju penghambatan terhadap patogen.
B. Potensi Formulasi Gliocladium dalam
Bentuk Biokompos
Hasil pengamatan menunjukkan bahwa
Gliocladium sp . dapat tumbuh dan berkembang dengan baik pada media serbuk gergaji-dedak  serta  mampu  mendekomposisi bahan  tersebut.  Jumlah  konidia  dalam formulasi biokompos (setelah proses pengomposan) sebesar 1,46 x 10 9 konidia per gram  (memenuhi  persyaratan  teknis  sesuai SNI  Agens  Pengendali  Hayati,  2014).  Bahan organik  berupa  campuran  serbuk  gergaji- dedak  tampak  terdekomposisi  sempurna dengan  dicirikan  warna  hitam  pekat  diikuti warna  kehijauan  di  seluruh  bagian  bahan organik  yang  menandakan  massa  konidia Gliocladium sp. (Gambar 4).
18.07 15 39.8 51.19 54.89 0 10 20 30 40 50 60 1 2 3 4
5 Pengamatan ke-
Gambar 4. Hasil dekomposisi serbuk gergaji dedak oleh Gliocladium sp.
Menurut  Hutabalian et  al. (2015),
Gliocladium juga berperan sebagai cendawan saprofitik.  Cendawan  kelompok  ini  dapat mendegradasi  senyawa  lignin  yang  terdapat pada bahan organik dari kelompok kekayuan. Menurut  Srebotnik et  al. (1998)  dalam Fitrianti  (2016),  jamur  saprofit/pelapuk memproduksi  enzim  oksidatif  ekstraselular yang mampu memecah bahan berlignoselulosa  menjadi  molekul-molekul yang  lebih  sederhana.  Selain  itu,  proses dekomposisi  serbuk  gergaji-dedak  dalam penelitian  ini  akibat  peran  senyawa  enzim selulase  yang  dihasilkan  oleh Gliocladium .
Menurut  Salem  dan  Rahman  (2015),  enzim selulase  yang  dihasilkan Gliocladium berupa endoglukanase  yaitu  enzim  yang  dapat mendegradasi  glukan  sebagai  salah  satu penyusun  selulosa.  Peningkatan  Enzim glukanase dapat dirangsang oleh konsentrasi substrat. Selain enzim glukanase, Gliocladium mampu  menghasilkan  enzim  karboksimetil selulase, yaitu enzim yang dapat mendegradasi  selulosa  sebagai  penyusun utama bahan organik.
Dedak yang juga salah satu bahan dasar biokompos  dalam  penelitian  ini  merupakan sumber nutrisi yang baik untuk pertumbuhan
Gliocladium sp. Menurut Syawal et al. (2018), dedak/bekatul  merupakan  sumber  karbon, nitrogen, nutrisi, karbohidrat, serta vitamin B kompleks yang berperan dalam pertumbuhan dan  perkembangan  miselium  jamur.  Lebih lanjut  Nunilahwati et  al. (2020)  melaporkan bahwa  dedak  memiliki  kandungan  nutrisi antara  lain  karbohidrat  84,36%,  protein 8,77%, lemak 1,09%, abu 1,60 %, serat 1,69% yang berperan dalam pertumbuhan miselium jamur.
Tekstur  dedak  dan  sebuk  gergaji  yang halus  dan  remah  sangat  mendukung Gliocladium untuk  tumbuh  dengan  baik melalui  partikel-partikel  kecil  dedak  dan serbuk  gergaji  serta  memungkinkan  suplai oksigen dari lingkungan. Menurut Hidayat dan Isnawati (2021), fermentasi pada dedak/bekatul  dapat  meningkatkan  kadar protein  kasar  dan  menurunkan  kandungan serat kasar dalam dedak/bekatul.

## KESIMPULAN
1. Gliocladium sp.  mampu  menghambat pertumbuhan P. capsici dengan tingkat penghambatan sebesar 54,89% setelah
5 hari inokulasi.
2. Formulasi Gliocladium menggunakan serbuk  gergaji-dedak  berpotensi  baik untuk dikembangkan sebagai
biokompos.

## DAFTAR PUSTAKA
Agussalim,  Raharjo,  D.,  &  Assad  M.  (2017). Kajian  pengendalian  penyakit  busuk pangkal batang lada dengan modifikasi
iklim  mikro. Jurnal  Pengkajian  dan Pengembangan  Teknologi  Pertanian,
20 (1), 59-67.
Badan  Standardisasi  Nasional.  (2014).  SNI 8027.3: 2014. Agens pengendali hayati (APH)  Bagian  3: Trichoderma  spp.
Badan Standardisasi Nasional: Jakarta.
Dewi  R.  S.,  &  Ahmad,  R.  Z.  (2021). Pemanfaatan Trichoderma spp.  dan Gliocladium  virens pada  pembuatan kompos. Jurnal Mikologi Indonesia, 5 (1),
30 – 40.
https://doi.org/10.46638/kmi.v5i1.16 0 Direktorat  Jenderal  Perkebunan.  (2019). Statistik Unggulan Perkebunan Nasional 2019-2021. Fitrianti,  F  (2016).  Efektivitas  isolat  jamur pelapuk  dan  mikroorganisme  lokal dalam menguraikan limbah kulit kakao. Agrovital Jurnal Ilmu Pertanian, 1 (1), 9- 11.
https://doi.org/10.35329/agrovital.v1 i1.78
Hasan R., Binna Lv., Uddin, M. J., Yingying, C., Fan, L., Sun, Z., Sun, M., & and Shidong, L.  (2022).  Monitoring  Mycoparasitism of Clonostachys  rosea against Botrytis cinerea Using  GFP. Journal  of  Fungi,
8 (567),
1-14. https://doi.org/10.3390/jof8060567 Hidayat R. A., & Isnawati, I. (2021). Isolasi dan karakterisasi  jamur  selulolitik  pada fermetodege: pakan fermentasi berbahan  campuran  eceng  gondok, bekatul  padi,  dan  tongkol  jagung. LenteraBio:  Berkala  Ilmiah  Biologi,
10 (2),
176-187. https://doi.org/10.26740/lenterabio.v 10n2.p176-187
Hutabalian,  M.,  Pinem,  M.  I.,  &  Oemry,  S. (2015).  Uji  antagonisme  beberapa jamur  saprofit  dan  endofit  dari tanaman  pisang  terhadap Fusarium oxysporum f.sp. cubens di laboratorium. Jurnal  Online  Agroekoteknologi,  3 (2), 687-695.
Malik A. F., Nurmalita, T. D., & Hidayanti, A. R. (2022). Efficacy of microbial Concortia with  liquid  organic  fertilizer  for  leaf spot  disease  control  on  oil  palm nursery. International  Journal  of  Oil Palm, 5 (1), 16-25.
Nunilahwati, H., Syafrullah,  S., & Kurniawan, R.  (2020).  Pertumbuhan dan  produksi jamur tiram putih ( Pleurotus ostreatus ) pada  perbedaan  komposisi  media tanam. Klorofil, 15 (1), 45-49. https://doi.org/10.32502/jk.v15i1.37 25 Permatasari,  N.  (2015).  Analisis  daya  saing dan  faktor-faktor  yang  mempengaruhi ekspor lada Indonesia ke negara tujuan ekspor. Skripsi .  Departemen  Ilmu Ekonomi.  Fakultas  Ekonomi  dan Manajemen.  Institut  Pertanian  Bogor. Bogor.
Risthayeni,  P.,  Hasanuddin,  H.,  &  Zahara,  F. (2018). Uji  efektifitas jamur  antagonis Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp. untuk mengendalikan penyakit pokahbung  ( Fusarium  moniliforme ) pada  tanaman  tebu  ( Saccharum officinarum ). Jurnal Online Agroekoteknologi, 6 (2), 339-344. Rizal, S. (2017). Uji antagonis Gliocladium sp. dalam  menghambat  pertumbuhan cendawan  penyebab  penyakit  busuk antraknosa  ( Colletotrichum  capsici ). J.
Sainmatika, 14 (2), 100-106. https://doi.org/10.31851/sainmatika. v14i2.1419
Saefudin, S. (2014). Tantangan dan kesiapan teknologi  penyediaan  bahan  tanam mendukung peningkatan produktivitas nasional  tanaman  lada  ( Piper  nigrum L.). Perspektif, 13 (2), 111-125. Salem,  A.  A.,  &  Rahman,  A.  H.  (2015). Optimization  and  characterization  of cellulolytic  enzymes  produced  from
Gliocladium roseum . Journal of Agricultural Chemistry and Biotechnology ,  6  (11),  473-488. https://doi.org/10.21608/jacb.2015.4
8469
Soenartiningsih,  S.,  Djaenuddin,  N.,  & Saenong,  M.  S.  (2014).  Efektivitas Trichoderma sp.  dan Gliocladium sp. sebagai agen biokontrol hayati penyakit  busuk  pelepah  daun  pada jagung. Jurnal  Penelitian  Pertanian Tanaman  Pangan,  33 (2),  129-135. https://doi.org/10.21082/jpptp.v33n2 .2014.p129-135 Soesanto, L. (2013). Pengantar Pengendalian
Hayati Penyakit Tanamanedisi Ke-2. Pt Rajawali Pers. Jakarta.
Syawal, M., Lasmini, S. A., & Ramli, R. (2018). Pengaruh komposisi dedak dan tepung jagung  pada  bahan  media  serbuk gergaji  terhadap  pertumbuhan  dan hasil  jamur  tiram  putih  ( Pleurotus ostreatus ).  e-J.  Agrotekbis,  6(3),  321- 328. https://jurnal.faperta.untad.ac.id/inde x.php/agrotekbis/article/view/364 Yulianto,  E.  (2014).  Evaluasi  potensi beberapa jamur agens antagonis dalam menghambat  patogen Fusarium sp. pada  tanaman  jagung  ( Zea  mays L.) Tesis . Universitas Bengkulu. Bengkulu.