J.  Agrotek    Tropika.    ISSN  2337-4993 Vol. 8,  No. 2: 225 - 234,  Mei 2020

## KERUSAKAN PASCAPANEN PADA UBI KAYU HASIL PEMULIAAN SELAMA  PENYIMPANAN

## POSTHARVEST  DETERIORATION  OF  BREEDING  CASSAVA DURING THE  STORAGE
Rina Heldiyanti 1* , Sutrisno 1 , Nurul Khumaida 2 dan Emmy Darmawati 1
.
1 Teknologi Pascapanen, Departemen Teknik Mesin dan Biosistem, Institut Pertanian Bogor Kampus Dramaga, Bogor, Indonesia
2 Bioteknologi Tanaman, Departemen Agronomi dan Hortikultura, Institut Pertanian Bogor Kampus Dramaga, Bogor, Indonesia
*Email: rheldiyanti@gmail.com

## ABSTRACT
Postharvest deterioration is a major problem which is an obstacle for cassava handling both for conven- tional cassava variety and mutant variety. There are two types of postharvest deterioration on cassava, namely postharvest primary deterioration (PPD) or primer deterioration of physiological deterioration, and microbiological deterioration. Damage can be minimized by carrying out storage in optimal condi- tions. This study aimed to determine the level of postharvest deterioration on cassava variety R and U during 35 days of storage. The storage treatment was storage consist of 1) wooden boxes and moist sawdust storage (P1)  and  2)control storage (P2). The results indicated that RP2 and UP2  produced physiological deterioration by 25% on the 7th day of  storage and reached 100% on the 35th day of storage. Meanwhile, the percentage of microbiological deterioration reached more than 20% on the 14th day of storage. On the other hand,  RP1 and RP2 indicated good results. Both varieties experienced only less than 25% physiological deterioration and did not experience microbiological deterioration during storage.
Keywords: Cassava, microbiological deterioration, physiological deterioration,  storage conditions, sawdust

## ABSTRAK
Kerusakan pascapanen merupakan permasalahan utama yang menjadi hambatan dalam penanganan ubi kayu baik ubi kayu varietas lokal maupun ubi kayu hasil induksi mutasi. Terdapat dua kerusakan pascapanen pada ubi kayu yaitu postharvest primary deterioration (PPD) atau kerusakan primer atau disebut juga kerusakan fisiologis serta kerusakan mikrobiologis atau disebut kerusakan sekunder. Kerusakan dapat diminimalisir dengan melakukan penyimpanan dalam kondisi yang optimal. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui tingkat kerusakan pascapanen pada ubi kayu selama 35 hari penyimpanan pada varietas R dan U. Perlakuan penyimpanan yang digunakan yaitu: 1) penyimpanan dengan menggunakan kotak kayu dan serbuk kayu (P1) dan 2) penyimpanan kontrol (P2). Hasilnya menunjukkan bahwa pada perlakuan RP2 dan UP2 di hari ke-7 penyimpanan menghasilkan persentase kerusakan fisiologis 25% dan mencapai 100% pada hari ke 34 penyimpanan. Sementara itu persentase
kerusakan mikrobiologisnya mencapai lebih dari 20% pada hari ke-14 penyimpanan. Berbeda dengan perlakuan RP1 dan UP1 yang hanya mengalami kerusakan fisiologis sebesar 25% dan tidak mengalami kerusakan mikrobiologis selama penyimpanan.
Kata Kunci : Kerusakan fisiologis, kerusakan mikrobiologis, kondisi penyimpanan, serbuk kayu, ubi kayu

## PENDAHULUAN
Meningkatnya kebutuhan ubi kayu di masa mendatang mendorong pengembangan varietas ubi kayu baru yang unggul. Pengoptimalan produksi ubi kayu sebagai bahan pangan dapat dilakukan dengan mengembangkan karakter penting pada ubi kayu yaitu produktivitas tinggi dan  kadar pati tinggi. Upaya untuk mendapatkan karakter yang diinginkan tersebut adalah dengan melakukan suatu program pemuliaan dengan syarat  keragaman  genetik  tanaman  yang  tinggi (Khumaida et.al, 2015).
Salah  satu  cara  peningkatan  keragaman genetik  adalah  dengan  induksi  mutasi.  Metode pemuliaan yang umum digunakan untuk meningkatkan variasi genetik pada tanaman vegetatif seperti ubi kayu adalah dengan induksi mutasi menggunakan iradiasi sinar gamma. Metode ini dapat menghasilkan varietas ubi kayu baru yang unggul (Yani et.al , 2018).
Namun, permasalahan pascapanen pada ubi kayu baik varietas lokal maupun hasil pemuliaan menjadi salah satu hambatan dalam pengolahannya. Ubi kayu  cepat  mengalami  kerusakan  pascapanen. Kerusakan pada ubi kayu dibagi menjadi kerusakan fisiologis dan kerusakan mikrobiologis (Ginting, 2002).
Kandungan air yang cukup tinggi yaitu sekitar 65% menyebabkan ubi kayu sangat mudah rusak (Haloho, 2014).
Ubi  kayu  hasil-hasil  induksi  mutasi  yang selanjutnya disebut ubi kayu hasil  pemuliaan. Ubi kayu hasil pemuliaan yang berasal  dari varietas Gajah hanya dapat disimpan hingga 6 hari di dalam suhu ruang. Kerusakan dimulai dengan perubahan warna umbi dari putih menjadi kecoklatan atau kehitaman dan diakhiri dengan pembusukan umbi. Penurunan bobot umbi mengalami peningkatan, sedangkan kadar pati dan air mengalami  penurunan  seiring  dengan  lamanya penyimpanan. Sementara itu ubi kayu varietas lokal hanya dapat disimpan selama 48 jam (Noerliyanti, 2017).
Salah satu upaya yang dapat dilakukan untuk meminimalisir kerusakan pascapanen adalah melalui penyimpanan dengan modifikasi kondisi lingkungan dalam kondisi yang optimal. Kondisi optimal untuk penyimpanan  ubi kayu adalah pada suhu 26.5-29.3°C (80°-85°F) dengan kelembaban relatif (RH) 90-95% (Osunde dan Fadeyibi,  2011).
Oleh karena itu penelitian ini bertujuan untuk mengetahui tingkat kerusakan pascapanen pada ubi kayu hasil pemuliaan yang berasal dari varietas Ratim dan dan varietas UJ-5 selama penyimpanan.

## BAHAN DAN METODE Bahan dan alat
Bahan utama yang digunakan dalam penelitian
ini adalah ubi kayu hasil pemuliaan yang berasal dari varietas Ratim (R)  dan varietas UJ-5 (U), masing- masing berumur 10 bulan dengan berat per umbi 400 gr dan panjang 20-27cm. Sementara itu alat yang digunakan adalah serbuk kayu, kotak kayu, wood moisture meter dan hygrometer .

## Penyimpanan
Setelah dipanen, ubi kayu dipisahkan dari daun dan batangnya, kemudian dikumpulkan untuk disortasi. Tanah yang menempel pada ubi kayu tidak dibersihkan. Ubi kayu yang telah disortasi kemudian dikemas dalam karung plastik untuk kemudian diangkut menuju ruangan gudang penyimpanan. Terdapat dua kondisi penyimpanan untuk varietas R dan Varietas U yaitu:
1) Penyimpanan di dalam kotak kayu yang dilapisi serbuk kayu lembab (P1)
2) Penyimpanan kontrol (P2)
Dengan  demikian  terdapat  4  kombinasi perlakuan: RP1, RP2, UP1, dan UP2. Masing-masing kombinasi dulang sebanyak tiga kali ulangan, sehingga terdapat 12 unit perlakuan.
Jumlah umbi yang digunakan  per ulangan adalah 10 buah. Jumlah kotak kayu yang digunakan adalah 6 kotak kayu (RP1 1 , RP1 2 , RP1 3 , UP1 1 , UP1 2 , dan  UP1 3 )  dengan  ukuran  berukuran 50cmx45cmx25cm.  Jumlah  serbuk  kayu  yang digunakan adalah 2 kg per kotak.
Serbuk  kayu  dikondisikan  dalam  kondisi lembab agar memenuhi kondisi penyimpanan optimal untuk ubi  kayu. Serbuk kayu  lembab didapatkan dengan cara menambahkan air sedikit demi sedikit ke
serbuk kayu hingga tercapai kadar air 14% (Quevedo et.al, 2014). Kadar air ini dipertahankan dengan cara menambahkan air setiap hari ke  serbuk kayu. Kadar air 14% digunakan untuk menciptakan kondisi optimum (Suhu 26-28°C dan RH 70-90%) untuk penyimpanan ubi kayu segar. Penyimpanan dilakukan selama 35 hari. Suhu dan RH baik di dalam kotak kayu maupun suhu dan  RH  lingkuangan  diamati  selama  35  hari penyimpanan.
Perlakuan  kontrol  dilakukan  dengan menempatkan ubi kayu di atas lantai berbahan keramik. Penyimpanan di dalam kotak kayu dilakukan dengan melapisi bagian dasar kotak dengan serbuk gergaji lembab dengan ketebalan sekitar 1 cm, kemudian ubi kayu disusun diatas lapisan tersebut dan ditutup kembali dengan serbuk gergaji lembab dengan ketebalan lapisan sekitar 5 cm.

## Pengamatan
Tingkat kerusakan yang diamati terdiri atas kerusakan fisiologis dan kerusakan mikrobiologis. Kerusakan  fisiologis  berupa  goresan  vaskular ( vascular streaking) berwarna biru kehitaman atau kecoklatan yang searah jaringan pembuluh vaskular sementara  itu  kerusakan  mikrobiologis  berupa kebusukan  umbi.  Pengamatan  dilakukan  dengan langkah-langkah sebagai berikut:
1. Satu buah umbi untuk setiap ulangan dipotong melintang menjadi tiga bagian yaitu: pangkal, tengah dan ujung.
2. Tingkat kerusakan pada setiap bagian diamati secara visual berdasarkan skala 7 pada Tabel 1 kemudian dirata-ratakan.
Kerusakan mikrobiologis 0= tidak busuk, 1= kebusukan < 20%, 2=21-40% busuk 3=41-60% busuk
4=61-80 % busuk
5= 81-100%
5=76-100% goresan vaskular
Kerusakan fisiologis
1= Tidak terdapat goresan
vaskular 2= 25% goresan vaskular 3= 26-50% goresan vaskular 4= 50% goresan vaskular
Tabel 1. Skala tingkat kerusakan pada ubi kayu selama penyimpanan

## Analisis Data
Data hasil pengamatan  diolah dengan statistika deskriptif menggunakan software MS.Excel.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Suhu dan RH  selama penyimpanan
Tercatat bahwa suhu rata-rata selama 35 hari di  dalam  kotak  kayu  stabil  pada  nilai  27-28°C sedangkan RH stabil pada 80-90%. Hal ini sesuai dengan kondisi optimum untuk penyimpanan ubi kayu segar yaitu 26.5-29.3°C dengan RH 90-95%.  Pada kondisi ini, aktivitas fisiologis yang menyebabkan kerusakan berjalan lebih lambat sehingga umur simpan ubi kayu dapat diperpanjang (Babarinsa dan Oluwalana, 2018). Serbuk kayu mempunyai kemampuan untuk mempertahankan jumlah air yang diserapnya, sehingga hal  ini  sangat  membantu  dalam  menjaga mempertahankan kondisi penyimpanan yang optimal (Maharani et.al, 2010).

## Kerusakan Fisiologis
Postharvest physiology deterioration (PPD) telah menjadi salah satu permasalahan dalam pemasaran ubi kayu. Hal ini dipicu oleh kerusakan fisik pada umbi saat  proses  panen  (Saravanan et.al, 2015).  PPD
merupakan  sebuah  proses  yang  kompleks  yang dihubungkan oleh gangguan yang terjadi pada enzim saat luka, melibatkan perubahan dalam ekspresi gen, sintesis protein, dan akumulasi metabolit sekunder. Kerusakan primer juga melibatkan perubahan dalam aktivitas enzim oksidatif yang menghasilkan senyawa fenol, termasuk katekin dan leukoantosianidin yang kemudian  mengalami  polimerisasi  dalam  tahap berikutnya untuk membentuk tannin (Sa´nchez et.al , 2013)
PPD  muncul  dari  lokasi  timbulnya  luka (Saravanan et.al, 2015). Luka diartikan dalam arti luas sebagai keadaan ketika umbi telah dipisahkan dari akar di  dalam  tanah  dan  dari  batang.  Umbi  ubi  kayu merupakan organ penyimpanan untuk fotosintesis bukan untuk propagulasi dengan fungsi reproduksi sehingga tidak ada kemampuan untuk memperbaiki luka ketika umbi sudah dilepaskan dari akarnya. Secara visual, terdapat tiga bagian pada penampang melintang umbi yaitu; peel, central pith dan vascular bundle (Gambar 2) (FAO, 1999). Kerusakan fisiologis mulai muncul pada hari ke-7 penyimpanan. Baik varietas R maupun U yang disimpan dengan kontrol, cenderung menunjukkan  warna  biru  kehitaman  dan  sedikit
Gambar 1. Suhu dan RH di dalam kotak kayu selama penyimpanan
Gambar 2. Tiga bagian pada penampang melintang umbi
Gambar 4. Varietas R dan U dengan penyimpanan dalam kotak kayu pada hari ke 7 penyimpanan
Gambar 3. Kerusakan Fisiologis pada varietas R dan U dengan kontrol pada hari ke 7
pen--coklatan pada bagian central pith. Kerusakan ini terjadi sejak hari ke-7 (Gambar 3) hingga hari ke- 35 penyimpanan (Gambar 5). Sementara itu pada varietas R dan U yang disimpan di dalam kotak kayu berlapis serbuk kayu, tidak terjadi kerusakan fisiologis sejak  hari  ke-7  (Gambar  4)  hingga  hari  ke-28 penyimpanan (Gambar 6).
Tahap  pertama  dalam  proses  PPD  adalah terbentuknya spesies reaktif oksigen (ROS) seperti superoksidasi radikal (O 2 -), hidroksil radikal (OH) dan hidrogen peroksida (H 2 O 2 ) yang mengubah ekspresi gen dan akumulasi metabolit sekunder (Zidenga et.al, 2012). Tumbuhan dan organisme hidup lainnya dalam lingkungan  yang teroksidasi selalu menghasilkan ROS
Gambar 5. Kerusakan Fisiologis pada varietas R dan U dengan kontrol pada hari ke 35 penyimpanan
Gambar 6. Kerusakan Fisiologis pada varietas R dan U dengan kotak kayu dan serbuk gergaji pada hari ke 28 penyimpanan
dari kloroplas, mitokondria, peroksisom dan organela subseluler lainnya karena proses metabolisme seperti fotosintesis dan respirasi. Kelebihan produksi ROS dipicu  oleh  serangan  patogen  atau  stress  yang disebabkan  oleh  kondisi  lingkungan  dapat menyebabkan kerusakan sel (Djabou et.al, 2017).
Spesies reaktif oksigen merupakan senyawa pengoksidasi turunan oksigen yang bersifat sangat reaktif yang terdiri atas kelompok radikal bebas dan kelompok non radikal. Oksigen menjadi reaktif ketika struktur elektronnya dikonversi ke spesies reaktif oksigen  seperti singlet  oxygen (O 2 ), superoxide radical (O 2 ), hydrogen  peroxide (H 2 O 2 ),  dan hydroxyl  radical (OH - ).  Formasi  ROS  telah ditunjukkan terjadi dengan cepat pada ubi kayu yang
telah dipanen: O 2 - dalam 15 menit, O 2 dalam 3 atau 4 jam, H 2 O 2 dalam 3-24 jam dan OH - dalam 36 jam (Getzin dan Fellman, 2011).  Radikal bebas adalah suatu molekul yang pada lapisan elektron terluarnya tidak mempunyai elektron berpasangan. Akibatnya radikal bebas akan selalu berusaha mengambil elektron dari molekul atau senyawa lain di sekitarnya. Apabila radikal bebas mengambil elektron dari protein, lemak, asam nukleat dari suatu sel maka komponen protein, lemak dan asam nukleat dari sel tersebut akan berubah dan fungsi sel tersebut akan terganggu (Reilly et.al , 2004).
Selain  ROS,  metabolit  sekunder  seperti senyawa polifenol juga berperan dalam proses PPD pada ubi kayu. Telah dibuktikan bahwa polifenol
0
7 14 21 28 35 RP2 0 25 26-50 50 76-100 76-100 RP1 0 0 0 0 0 <25 UP2 0 25 26-50 50 76-100 76-100 UP1 0 0 0 0 0 <25
Perlakuan
*Tingkat kerusakan vaskular (%) pada hari ke-
Tabel 2. Tingkat kerusakan fisiologis ubi kayu selama penyimpanan
*Nilai rata-rata ulangan
meningkat selama proses PPD pada ubi kayu. Senyawa fenolik yang terkait dengan perkembangan penurunan fisiologis telah diidentifikasi dan termasuk scopoletin, scopolin, esculin, proanthocyani proanthocyanidins, catechin, dan gallocatechin . Produksi scopoletin dan beberapa senyawa yang berhubungan dengan skopolin tampaknya berkontribusi pada peningkatan fluoresensi perubahan warna selama proses PPD pada ubi kayu. Oksigen diperlukan untuk memulai proses PPD (Huang et.al, 2001). Scopoletin berperan  dalam pengembangan PPD pada ubi kayu. Ketika diterapkan pada umbi yang baru dipotong, scopoletin mampu menghasilkan perubahan warna yang intens dan cepat di dalam jaringan. Diantara berbagai senyawa fenolik yang diterapkan pada jaringan yang dipanen, hanya scopoletin yang menyebabkan perubahan warna yang signifikan ( Mattinson et al, 2010) . Scopoletin dapat dideteksi oleh fluoresensi dalam sinar UV karena itu membentuk kompleks biru ketika dioksidasi oleh ROS dan enzim peroksidase yang berkontribusi terhadap perubahan warna biru-hitam pada ubi kayu selama penyimpanan ( Zainuddin et.al, 2017) .
Terdapat hubungan yang sangat kuat antara peristiwa hidrolisis HCN melalui sianogenesis dengan
munculnya ROS pada tahap awal kerusakan fisiologis. gangguan jaringan akibat luka saat panen menginisiasi sianogenesis melalui kontak antara linamarin dengan enzim linamarase. Sianida atau HCN menghambat rantai  transport  elektron  dalam  mitokondria  di kompleks IV. Akibatnya, kompleks IV menghasilkan ROS yang dimunculkan melalui kompleks 1 dan III dalam rantai transport elektron. ROS inilah yang kemudian  menyebabkan  terjadinya  persitiwa kerusakan fisiologis pada umbi (Zidenga et.al, 2012 dan Reilly et.al, 2004).
Seperti yang terlihat pada Tabel 2,  perlakuan RP2  dan  UP2  cenderung  mengalami  kenaikan persentase  kerusakan  fisiologis  hingga  akhir penyimpanan. Berbeda dengan RP1 dan UP1 yang tidak mengalami kerusakan fisiologis selama 28 hari penyimpanan. Kerusakan fisiologis terjadi pada hari ke-35 penyimpanan dengan persentase kurang dari 25%.

## Kerusakan Mikrobiologis
Kerusakan mikrobiologis terjadi ketika umbi sudah  menjadi  tidak  layak  lagi akibat  kerusakan fisiologis (Uarrota et.al, 2015). Kerusakan ini tampak sebagai  bentuk  kebusukan  umbi.  Kerusakan  ini
0 7 14 21 28 35 RP2 0 0 0 21-40 41-60 81-100 RP1 0 0 0 0 0 0 UP2 0 0 0 21-40 41-60 81-100 UP1 0 0 0 0 0 0
*Tingkat kerusakan mikrobiologis (%)  pada hari ke
Perlakuan
Tabel 3. Tingkat kerusakan mikrobiologis pada ubi kayu selama penyimpanan
*Nilai rata-rata ulangan

## DAFTAR PUSTAKA
Khumaida N, Ardie S, Dianasari M, Syukur M. 2015. Cassava  ( Manihot  esculenta Crantz.)  im- provement  through  gamma  irradiation. Procedia Food Science. (3) 27–34
Yani RH, Khumaida N, Ardie SW, Syukur M. 2018. Analysis of Variance, Heritability, Correlation and Selection Character of M1V3 Generation Cassava ( Manihot esculenta Crantz) Mu- tants. AGRIVITA Journal of Agriculture Sci- ences. 40(1), 74-79.
Ginting E. 2002. Teknologi penanganan pascapanen dan pengolahan ubi kayu menjadi produk- antara untuk mendukung agroindustri. Bul. Palawija. (4): 67–83.
Haloho JH. 2014. Pengolahan Ubi kayu Dalam Upaya Percepatan Diversifikasi Pangan Di Kalimantan
ditandai  oleh  perubahan  warna  umbi  menjadi kekuningan dan diikuti oleh pelunakan. Aroma umbi juga mengalami perubahan menjadi aroma sedikit asam dan cenderung sedikit busuk.
Berdasarkan Tabel 3, persentase kerusakan mikrobiologis  pada  RP2  dan  UP2  mengalami peningkatan  sejak  hari  ke-21  hingga  akhir penyimpanan. Sementara itu perlakuan RP1 dan UP1 tidak mengalami kerusakan mikrobiologis selama penyimpanan. Kerusakan mikrobiologi tampak seperti pada Gambar 6.

## KESIMPULAN
Kerusakan fisiologi terjadi pada ubi kayu yang disimpan dengan kondisi kontrol yaitu pada perlakuan RP2 dan UP2. Kerusakan ini terjadi pada hari ke-7 penyimpanan dengan tingkat kerusakan yang cenderung meningkat  hingga akhir penyimpanan. Sementara itu kerusakan mikrobiologis mulai terjadi pada hari ke-14 dengan  persentase  yang  juga  terus  mengalami peningkatan. Berbeda halnya dengan ubi kayu yang disimpan dengan kotak kayu dan serbuk kayu yaitu pada perlakuan RP1 dan UP1. Kerusakan fisiologis mulai terjadi pada hari ke-28 penyimpanan  dan tidak
mengalami kerusakan mikrobiologis. Penyimpanan ubi kayu di dalam kotak kayu yang diselimuti serbuk kayu lembab memberikan hasil yang cenderung lebih baik dibandingkan  kontrol.  Penggunaan  serbuk  kayu lembab mampu menciptakan kondisi lingkungan yang optimum untuk penyimpanan ubi kayu.
Barat. Prosiding Seminar Hasil Penelitian Tanaman Aneka Kacang dan Umbi 2014.
Noerliyanti I. 2017. Analisis karakteristik dan umur simpan beberapa genotip ubi kayu ( Manihot esculenta Crantz.) hasil pemuliaan [skripsi].
Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor
Osunde ZD, Fadeyibi A. 2011. Storage methods and some uses of cassava in Nigeria. Continental J. Agricultural Science. Vol 5 (2): 12–18.
Quevedo MA, Arsenio DR, Ness Mlsta.iglesia. 2014.
Evaluation of appropriate storage technologies for shelf-life improvement of cassava ( Manihot esculenta Crantz) roots for marginal upland farmers. Annuals of tropical research. (36): 139- 153.
Babarinsa OA, Oluwalana IB. 2018. Effect of storage of fresh cassava in sawdust on gari process- ing. Journal of Postharvest Technology. Vol 6(1): 57-62.
Maharani R, Tamai Y, Takashi Y. 2010.  Scrutiny On Physical Properties Of Sawdust From Tropi- cal Commercial Wood Species: Effects Of Different Mills And Sawdust’s Particle Size And Terazawa Minoru. Journal of Forestry Re- search Vol. 7(1).
Saravanan R, Patel J, Chakrabarti SK. 2015. Evalua- tion of postharvest physiological deterioration in  storage  roots  of  cassava  ( Manihot esculenta Crantz) genotypes. Indian Journal of Agricultural Sciences. Vol 85 (10): 1279– 84.
Sa´nchez T, Dufour D, Moreno JL, Pizarro M, Arago´n IJ, Domý´nguez M, Ceballos. 2013. Changes in extended shelf life of cassava roots during
storage in ambient conditions. Postharvest Biol Technol. 86:520–528.
[FAO] Food and Agriculture Organization. 1999. CASSAVA: Post-harvest Operations.
Zidenga T,  Leyva-guerrero E, Moon  H, Siritunga D,
Sayre R. 2012. Extending cassava root via reduction of reactive oxygen species produc- tion. Plant physiol. 159 (4), 1396–1407.
Djabou ASM, Carvalho, LJCB, Li QX, Niemenak N, Chen S. 2017. Cassava post harvest physi- ological deterioration: a complex phenomenon involving calcium signaling, reactive oxygen species  and  programmed  cell  death. Acta physiol. Plant. Vol 39 (4): 91.
Getzin EM, Fellman JK. 2011. Confocal imaging stud- ies of postharvest physiological deterioration in cassava ( Manihot esculenta Crantz) root tissue. Toivonen (Ed.), Proc. 4th International Conference Postharvest Unlimited 2011. Acta Hort  Vol 945: 113–118.
Reilly K, Gómez-vásquez R, Buschmann H, Tohme J, Beeching JR. 2004. Oxidative stress responses during cassava post-harvest physiological de- terioration. Plant mol. Biol. Vol 56 (4): 625– 641.
Huang J, Bachem C, Jacobsen E, Visser RG. 2001. Molecular analysis of differentially expressed genes during postharvest deterioration in cas- sava ( Manihot esculenta Crantz) tuberous roots. Euphytica. Vol 120: 85–93.
Mattinson IS, Fellman JK. 2010. Study of the early events leading to cassava root postharvest de- terioration. Trop. Plant Biol. 3 (3), 151–165.
Zainuddin IM, Fathoni A, Sudarmonowati E, Beeching JR, Gruissem W, Vanderschuren H. 2017.
Cassava post-harvest physiological deteriora- tion: From triggers to symptoms. Postharvest Biology and Technology Uarrota VG, Nunes de Corta, Peruch M. 2015. To- ward  better  understanding  of  postharvest deterioration: biochemical changes in stored cassava ( Manihot esculenta Crantz) roots.
Food Science & Nutrition.  Vol  4(3): 409– 422.