Seleksi Aktinomisetes dalam Menghasilkan Indole Acetic Acid dan Efektivitas Terhadap Perkecambahan Benih Cabai Merah ( Capsicum annum L.)
Selection of Actinomycetes in Producing Indole Acetic Acid and Effect of Germination Seeds Red Pepper (Capsicum annum L.)
Yeyen Septia ANGGRAINI, Tetty Marta LINDA, Wahyu LESTARI
Jurusan Biologi FMIPA Universitas Riau Kampus Bina Widya Pekanbaru 28293, Indonesia email : tetty.martalinda@gmail.com
Abstract . Indole Acetic Acid (IAA)  is an important that could improve plant growth. Actinomycetes is one group of bacteria that could produce IAA. The purpose of this study was to examines the potential of  actinomycetes  from  Siak,  Riau  Peatland  in  producing  IAA  the  effects  to  red  pepper  ( Capsicum annuum L.) germination. The result of this study was collected 21 isolates of actinomycetes which able only to produced  IAA  in SCB ( Starch Casein  Broth ) medium with tryptophan addition. The  produce highest  IAA  in  L225  isolate  with  concentration  37,70  ±  1,00  µg/ml  by  medium  SCB  with  typtophan addition.  14  isolates  gave  respons  for  length  of  sprouts  parameters  and  20  isolates  gave  effect  to the root length parameters for red pepper seeds with incubation for 15 day .
Keywords : actinomycetes, IAA, tryptophan, SCB, red pepper.
Abstrak. Indole  Acetic  Acid (IAA)  berperan  penting  dalam  memacu  pertumbuhan  tanaman. Aktinomisetes merupakan salah satu kelompok bakteri yang mampu menghasilkan IAA. Penelitian ini bertujuan untuk menyeleksi aktinomisetes dari tanah gambut Siak, Riau dalam menghasilkan IAA dan pengaruhnya  terhadap  perkecambahan  tanaman  cabai  merah  ( Capsicum annum L.).  Hasil  penelitian menunjukkan  21  isolat  aktinomisetes  hanya  mampu  menghasilkan  IAA  pada  medium Starch  Casein Broth (SCB)  diperkaya  triptofan.  Produksi  IAA  tertinggi  dihasilkan  oleh  isolat  L225  dengan konsentrasi  37,70  ±  1,00  µg/ml  pada  medium  SCB  diperkaya  triptofan.  Ada  14  isolat  aktinomisetes memberikan respons terhadap panjang kecambah dan 20 isolat memberikan pengaruh terhadap panjang akar pada benih cabai merah dengan inkubasi selama 15 hari.
Kata kunci : aktinomisetes, IAA, triptofan, SCB, cabai merah.

## PENDAHULUAN
Indole  Acetic  Acid (IAA)  berperan dalam  menstimulasi  pertumbuhan  tanaman seperti  pemanjangan  sel,  pembesaran  sel, diferensiasi  jaringan  dan  respons  terhadap cahaya (Abd-Alla et al. 2013). IAA tidak hanya dihasilkan tanaman tetapi juga oleh mikroorganisme seperti bakteri,  Jamur maupun aktinomisetes.  Beberapa penelitian melaporkan bakteri  seperti Pseudomonas  putida , Bacillus
sp.  dan Azotobacter sp.  mampu  memproduksi IAA  pada  medium Nutrient  Broth (Patten  & Glick  2002;  Aryantha et  al .  2004;  Kholida  & Zulaika  2015).  Jamur Aspergillus  niger juga mampu memproduksi IAA 128,3 mg/L menggunakan  medium Czapek  Dox  Broth (Bilkay et al . 2010).
Aktinomisetes  merupakan  salah  satu bakteri  yang  memiliki  banyak  kemampuan, diantaranya adalah melarukan fosfat,
Biospecies Vol. 11 No. 2, Juli 2018. Hal 115 - 122
antagonisme  terhadap  jamur  patogen  tanaman dan  pemacu  pertumbuhan  tanaman  serta mampu menekan jumlah etilen berlebihan pada tanaman (Widawati et al . 2008; Gopalakrishnan et  al. 2011;  Harikrishnan et  al. 2014).  Hasil penelitian  Hajri  (2016)  melaporkan  bahwa aktinomisetes asal tanah gambut Riau mempunyai  kemampuan  dalam  melarutkan fosfat  yaitu  isolat  L11  dengan  konsentrasi sebesar 9,22 ppm dan menghambat pertumbuhan jamur patogen Fusarium oxysporum dan Colletotricum  capsici pada tanaman  cabai  merah.  Selain  itu,  isolat aktinomisetes  L313  mampu  menghasilkan protease  sebesar  0,41  U/ml  (Linda et  al. 2016) dan Pesrita (2017) melaporkan isolat aktinomisetes  L225  mampu  menghasilkan enzim  selulase  sebesar  35,30x10 -3 U/ml. Aktinomisetes  dapat  dijadikan  sebagai  agen biofertilizer  karena  mampu  meningkatkan pertumbuhan  dan  perkembangan  tanaman  serta kemampuan antifungal. Selain itu, aktinomisetes  juga  berperan  sebagai  pemacu pertumbuhan  tanaman  dengan  menghasilkan auksin  yaitu Indole  Acetic  Acid (IAA), menghasilkan giberelin dan sitokinin (Harikrishnan et al. 2014).
Beberapa hasil penelitian seperti Streptomyces sp  memiliki  kemampuan  untuk menghasilkan  IAA  pada  medium  ISP2 broth ( International
Streptomyces
Project-2 ) diperkaya  2  mM  L-triptofan    dengan  produksi IAA sebesar  88 µg/ml (Gajendran et  al. 2012). Penelitian Harikrishnan et al. (2014) melaporkan  bahwa Streptomyces sp.  dalam
ISP2 broth diperkaya 0,5% L-triptofan menghasilkan IAA lebih rendah 9,26 µg/ml dan dapat  meningkatkan  perkecambahan,  panjang akar  dan  berat  kering  tanaman  padi.  IAA  juga mampu dihasilkan oleh Steptomyces griseofuscus pada medium SCB ( Starch Casein Broth )  diperkaya  0,2%  L-triptofan  sebesar 145,9    µg/ml  (Gangwar et  al. 2014). Aktinomisetes  asal  tanah  gambut  Siak  Riau belum diketahui kemampuannya dalam menghasilkan IAA, sehingga diperlukan penelitian  lebih  lanjut  mengenai  kemampuan aktinomisetes  dalam  menghasilkan  IAA  dan
pengaruhnya  terhadap  perkecambahan  cabai merah ( Capsicum annum L.).

## BAHAN DAN METODE
Bahan  yang  digunakan  pada  penelitian ini  adalah  21  isolat  aktinomisetes,  benih  cabai merah PM 999 F1, medium Starch Casein Agar (SCA),  medium Starch  Casein  Broth (SCB), pereaksi Salkwoski, natrium  hipoklorit 2%,  dan kapas.  Penelitian  dilakukan  di  Laboratorium Mikrobiologi Jurusan Biologi Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam.

## Peremajaan Isolat Aktinomisetes
Dua  puluh  satu  isolat  aktinomisetes diremajakan pada medium SCA (10 g pati, 0,30 g kasein, 2 gram KNO 3 , 2 g K 2 HPO 4 , 2 g NaCl, 0,005  MgSO 4 .7H20,  0,02  g  CaCO 3 ,  0,010  g FeSO 4. 7H 2 O,  16  g  Agar,  1000  ml  akuades) dengan  menggunakan  metode streak  plate . Isolat diinkubasi pada suhu ruang selama 5 hari (Harikrishnan et al . 2014).

## Persiapan Inokulum Aktinomisetes
Aktinomisetes  pada medium  SCA diambil  sebanyak 4 disk yang  berukuran 6  mm untuk  diinokulasikan  ke  dalam  50  ml  medium SCB  (Hajri  2016).  Selanjutnya  diinkubasi dalam shaker  incubator selama  5  hari  pada suhu  30 º C  dengan  kecepatan  150  rpm. Penghitungan  populasi  aktinomisetes  dengan metode serial  dilution & Total  Plate  Count (TPC). Inokulum aktinomisetes yang digunakan adalah  populasi  10 8 CFU/ml  (Harikrishnan et al . 2014).

## Uji Produksi IAA
Inokulum  aktinomisetes  sebanyak  1  ml (10 8 CFU/ml)  dimasukkan  ke  dalam  4  ml medium  SCB  yang  diperkaya  dan  tanpa diperkaya  L-triptofan  (500  µg/ml)  (Pattern  & Glick  2002),  selanjutnya  diinkubasi  pada shaker  incubator selama  5  hari  dengan kecepatan 150 rpm pada suhu 30ºC
(Harikrishnan et  al . 2014).  Sebanyak 1 ml (10 8 CFU/ml)  inokulum  aktinomisetes  selanjutnya disentrifus pada kecepatan 3000 rpm selama 30 menit.  Pada  akhir  masa  inkubasi  supernatan
sebanyak  1  ml  dipindahkan  ke  dalam  tabung reaksi  steril  kemudian  ditambahkan  4  ml pereaksi Salkowski (150  ml  larutan  H 2 SO 4 pekat,  7,5  ml  FeCl 3 .6H 2 O  0,5  M,  250  ml akuades), kemudian diinkubasi selama 30 menit Selanjutnya, dilakukan pengukuran nilai absorbansi  dengan  spektrofotometer  pada panjang  gelombang  535  nm  (Pattern  &  Glick 2002).

## Uji  Perkecambahan  Cabai Merah  Secara In Vitro
Benih  cabai  yang  digunakan  adalah benih  yang  tenggelam  saat  direndam  dengan air,  selanjutnya  didesinfeksi  menggunakan natrium  hipoklorit  2%  selama  5  menit,  dicuci dengan  akuades  steril  sebanyak  3  kali  dan dikering-anginkan dalam cawan petri (Wahyuni 2016). Benih diberi perlakuan dengan perendaman  dalam  10  ml  inokulum  masing- masing  isolat  10 6 CFU/ml  selama  24    jam. Kontrol  adalah  benih  cabai  yang  direndam dalam akuades steril . Masing-masing dua puluh benih  cabai  diletakkan  di  dalam  cawan  petri steril yang sudah dilapisi dengan kapas.

## Parameter Pengamatan Perkecambahan Cabai Merah
Parameter  yang  diamati  adalah  panjang kecambah dan panjang akar. Panjang kecambah diukur dari pangkal batang sampai ujung shoot , sedangkan  panjang  akar  diukur  dari  pangkal leher  akar  primer  sampai  dengan  ujung  akar primer.  Pengukuran  dilakukan  15  hari  setelah penyemaian (HSP).

## Analisis Data
Data uji produksi IAA dan
perkecambahan cabai merah dianalisis menggunakan analisis varian (ANOVA) dengan program  SPSS  17  untuk  mengetahui  pengaruh perlakuan  terhadap  parameter,  dilanjutkan dengan  uji Duncan’s  Multiple  Range  Test (DMRT)  pada  taraf  5%  jika  terdapat  pengaruh nyata antar perlakuan.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Uji Produksi IAA
Keseluruhan  isolat  aktinomisetes  pada medium  SCB  tanpa  tripofan  menghasilkan warna  kekuningan  yang  mengindikasikan  tidak terbentuknya  IAA  seperti  yang  diperlihatkan pada  Gambar  1.  Penelitian  Meudt  dan  Gaines (1967);  Deslandes et  al .  (2001)  melaporkan warna  kuning  mengindikasikan  bahwa  isolat mampu  menghasilkan  indol, skatol, asam  indol butirat  maupun  asam  indol  propionat.  Hasil  ini berbeda  dengan  penelitian  Wahyuni  (2016) yang  melaporkan  bakteri  lokal  Riau  GGH 1 menggunakan  medium  NB  tanpa  triptofan menghasilkan  IAA  dengan  membentuk  warna kemerahan dan isolat bakteri GGH 4 menghasilkan warna merah muda.
Gambar  1  .  Warna  yang  terbentuk  pada  isolat aktinomisetes  setelah  penambahan pereaksi Salkowski pada  medium SCB  (a)  kontrol  (b)  Isolat  L11  (c) Isolat L225.
Seluruh  isolat  aktinomisetes  uji  pada medium SCB diperkaya triptofan  membentuk warna  merah  muda  yang  mengindikasikan bahwa  isolat  mampu  menghasilkan  IAA.  Hal ini  disebabkan  oleh  adanya  interaksi  antara IAA dengan pereaksi Salkowski yang mengandung  FeCl ₃ dan  H 2 SO ₄ membentuk senyawa  kompleks  tris-(indole-3-aceto)- iron (III)  (Sukmadewi et  al .  2015).  Hasil penelitian  Wahyuni  (2016)  melaporkan  isolat bakteri  GGH 1 dan  isolat  GGH 4 membentuk warna  merah  muda  pada  medium  NB diperkaya triptofan. Hasil penelitian menunjukkan  bahwa  isolat  aktinomisetes hanya  mampu  menghasilkan  IAA  pada medium  SCB  diperkaya  triptofan  saja. Gambar  2.  memperlihatkan  warna  yang mengindikasikan  terbentuknya  IAA  pada medium  SCB  diperkaya  triptofan  setelah penambahan pereaksi Salkowski .
Gambar 2 . Warna yang terbentuk pada isolat aktinomisetes setelah penambahan pereaksi Salkowski pada  medium SCB diperkaya triptofan (a)
Kontrol  (b)  Isolat  L11  (c)  Isolat
L225.
Hasil  produksi  IAA  menunjukkan bahwa  isolat  aktinomisetes  L225  (37,70  ± 1,00  µg/ml)  dan  L223  (36,49  ±  1,47) memberikan  hasil  berbeda  nyata  terhadap produksi  IAA  pada  medium  SCB  diperkaya triptofan. Produksi IAA oleh isolat aktinomisetes diperlihatkan oleh Tabel 1.
Tabel 1. Rata-Rata Konsentrasi IAA pada Medium SCB Diperkaya Triptofan
No Kode Isolat Konsentrasi IAA (µg/ml) No Kode Isolat Konsentrasi IAA (µg/ml) 1 L11 20,71 ± 1,18 hi 12 L421 9,01 ± 0,15 cd 2 L12 10,15 ± 0,53 d 13 L513 16,02 ± 3,71 efg 3 L13 3,45 ± 1,06 a 14 MH11 14,07 ± 0,45 e 4 L15 8,08 ± 0,24 cd 15 MH23 5,42 ± 0,22 ab 5 L18 21,74 ± 1,24 i 16 SM11 16,81 ± 0,91 fg 6 L121 7,00 ± 0,47 bc 17 SM12 18,15 ± 0,97 g 7 L223 36,49 ± 1,47 k 18 SM13 7,17 ± 1,00 bc 8 L225 37,70 ± 1,00 k 19 SM32 18,50 ± 1,36 gh 9 L311 17,68 ± 1,45 fg 20 SM111 15,32 ± 1,12 ef 10 L313 26,19 ± 3,69 j 21 SM113 6,68 ± 0,37 bc 11 L321 9,02 ± 0,62 cd
Keterangan:  Angka pada kolom dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT taraf 5%.
Produksi IAA oleh aktinomisetes pada penelitian  ini  lebih  tinggi  berbanding  dengan isolat  bakteri  GGO 2 yang  berasal  dari  tanah gambut  Riau  sebesar  24,51  ±  5,53  µg/ml menggunakan medium
NB dengan
penambahan  500  µg/ml  L-triptofan  dan inkubasi selama 3 hari (Wahyuni et al . 2016). Konsentrasi  IAA  ini  juga  lebih  tinggi dibanding  hasil  yang  dilaporkan  Mawarti (2017)  bahwa  isolat  aktinomisetes  lokal  Riau
menggunakan    medium  SCB  diperkaya triptofan  dan  inkubasi  selama  3  hari menghasilkan  IAA  sebesar  35,97  ±  4,06 µg/ml.  Hasil  pada  penelitian  ini  lebih  rendah dibanding  penelitian  Gangwar et  al. (2014) yang melaporkan produksi IAA oleh Steptomyces  griseofuscus pada  medium  SCB diperkaya  triptofan  dengan  waktu  inkubasi selama 7 hari sebesar 145,9 µg/ml. Berdasarkan  penelitian  ini,  konsentrasi  IAA yang  dihasilkan  oleh  isolat  aktinomisetes dipengaruhi oleh isolat yang diuji, media yang digunakan,  waktu  inkubasi,  populasi  isolat dan  penambahan  konsentrasi  triptofan  yang digunakan.
Aktinomisetes yang ditumbuhkan pada  medium  SCB  diperkaya  triptofan menghasilkan  IAA  yang  disintesis  melalui
jalur tryptophan-dependent pathway menggunakan  triptofan  sebagai    prekursor. Menurut    Spaepen et  al. (2007) sintesis  IAA dengan  memanfaatkan  triptofan  memiliki  5 jalur,  yaitu indole-3-acetamide (IAM),  jalur indole-3-pyruvic acid (IPyA), jalur triptamine (TAM),  jalur indole  3-acetonitrile (IAN)  dan jalur Trp side-chain oxidase (TSCO).

## Uji Perkecambahan Cabai Merah
Perendaman benih cabai merah  dalam inokulum  aktinomisetes  memberikan  respons pada  panjang  kecambah  dan  akar  cabai merah.  Rata-rata panjang kecambah dan akar dipelihatkan pada Tabel 2 dan perkecambahan cabai  merah  pada  15  HSP  secara in  vitro (Gambar 3).
Tabel 2.  Rata-rata panjang kecambah dan akar kecambah cabai merah pada 15 Hari Setelah Penyemaian (HSP)
No Kode Isolat Panjang Kecambah (cm) Panjang Akar (cm) No Kode Isolat Panjang Kecambah (cm) Panjang Akar (cm) 1 Kontrol 2,71 ± 0,11 a 4,06 ± 0,51 a 12 L321 3,63 ± 0,24 efg 5,72 ± 0,06 ghij 2 L11 3,84 ± 0,18 g 5,57 ± 0,25 fghi 13 L421 3,68 ± 0,34 efg 5,98 ± 0,28 ij 3 L12 2,97 ±  0,47 abc 4,19 ± 0,61 ab 14 L513 3,48 ± 0,09 defg 5,63 ± 0,22 fghi 4 L13 2,92 ± 0,35 ab 4,57 ± 0,18 bc 15 MH11 3,43 ± 0,19 def 5,42 ± 0,08 efgh 5 L15 3,14 ± 0,10 bcd 4,89 ± 0,21 cd 16 MH23 3,54 ± 0,16 defg 5.57 ± 0.07 fghi 6 L18 2,83 ± 0,10 ab 4,98 ± 0,08 cde 17 SM11 3,34 ± 0,16 cde 5,31 ± 0,25 fghi 7 L121 2,87 ± 0,13 ab 4,92 ± 0,18 bc 18 SM12 2,87 ± 0,32 bcd 4,79 ± 0,35 cde 8 L223 2,91 ± 0,19 ab 4,94 ± 0,18 bc 19 SM13 3,44 ± 0,13 defg 5,37 ± 0,16 defg 9 L225 3,19 ± 0,24 bcd 5,23 ± 0,13 def 20 SM32 2,72 ± 0,13 a 4,92 ± 0,12 bc 10 L311 2,99 ± 0,04 abc 5,16 ± 0,12 def 21 SM111 3,82 ± 0,14 fg 6,12 ± 0,19 j 11 L313 3,46 ± 0,07 defg 5,31 ± 0,28 defg 22 SM113 3,63 ± 0,19 efg 5,88 ± 0,09 hij
Keterangan:  Angka pada kolom dengan huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT taraf 5%.
Hasil  penelitian  menunjukkan  isolat L11 memberikan hasil berbeda nyata terhadap isolat  lainnya  dan  kontrol    pada  panjang kecambah  sebesar  3,84  ±  0,18  cm    (Gambar 3b).  Hasil  penelitian  Muthukumar et  al. (2010)  melaporkan  menggunakan  bakteri endofit  memberikan  respons  pada  panjang kecambah  cabai  secara in  vitro sebesar  4,33 cm dan penelitian Akintokun & Taiwo (2016)
menggunakan  rizobakteri  pada  kecambah tomat  dengan  panjang  kecambah  3,9  ±  0,01 cm  menggunakan  metode  yang  sama.  Hasil pada penelitian  ini  berbeda dengan penelitian yang dilaporkan Wahyuni (2016) menggunakan  isolat bakteri  lokal Riau GGH 3 pada  tanaman  cabai  merah  varietas  CA  237 dengan  media  tanah  memperoleh  panjang kecambah 2,83 ± 0,46 cm.
Gambar  3.      Perkecambahan  cabai  merah  pada  15  HSP  secara in  vitro (a)  Kontrol            (b)  Perlakuan isolat L11 (c) Perlakuan isolat SM111.
Isolat aktinomisetes tidak hanya memberikan  pengaruh  terhadap  panjang kecambah tetapi  juga panjang akar kecambah cabai  merah.  Isolat SM111  memberikan hasil berbeda nyata terhadap  isolat lain dan kontrol dengan  panjang  sebesar    6,12  ±  0,19  cm (Gambar 3c). Hasil penelitian Muthukumar et al .  (2010)  melaporkan  menggunakan  bakteri endofit  memberikan  respons  pada  panjang akar  cabai  sebesar  8,23  cm.  Wahyuni  (2016) melaporkan  pemberian  isolat  bakteri  lokal Riau  AGH 4 memacu  panjang  akar  sebesar 3,87  ±  1,17  cm  pada  tanaman  cabai  merah menggunakan  media  tanah.  Produksi  IAA yang  tinggi  tidak    menghasilkan    panjang kecambah  dan  akar  yang  tertinggi.    Panjang kecambah  dan  akar  cabai  merah  dapat dipengaruhi  oleh  sumber  isolat,  jenis  isolat, media  dan  varietas  cabai  merah  yang digunakan dalam uji perkecambahan.
Peningkatan  panjang  kecambah  dan akar cabai merah dipengaruhi oleh peran IAA dalam  menstimulasi  proses  pemanjangan  sel dengan mempengaruhi elastisitas dan plastisitas  dinding  sel.  Catala el  al. (2000) menyatakan  induksi  IAA  dapat  mengaktifkan pompa  proton  (ion  H +) pada  sitoplasma sehingga  menyebabkan  pH  sitoplasma  dan
dinding  sel  menjadi  asam.  Aktifnya  pompa proton  dan  kondisi  asam  dapat  memutuskan ikatan  hidrogen  antara  serat  selulosa  dinding sel  sehingga  dinding  sel  mudah  merenggang dan  tekanan  dinding  sel  menurun  serta  sel menjadi  elastis.  Kondisi  ini  menyebabkan  air mudah  masuk  dan  tekanan  turgor  meningkat. Hal  ini  menyebabkan  sel  mengembang sehingga  terjadi  pemanjangan  sel  dan  proses pembentukan dinding sel yang baru.

## KESIMPULAN
Isolat  aktinomisetes  hanya  mampu menghasilkan  IAA  pada  medium  SCB diperkaya triptofan. Isolat aktinomisetes L225 menghasilkan  IAA  tertinggi  pada  medium SCB diperkaya  triptofan  dengan  konsentrasi 37,70 ± 1,00  µg/ml. Isolat aktinomisetes L11 memberikan hasil yang berbeda nyata dengan isolat  lain  dan  kontrol  pada  panjang kecambah  dan  isolat  aktinomisetes  SM111 pada  panjang  akar  kecambah  cabai  merah secara in vitro.

## Ucapan Terima Kasih
Penelitian  ini  didanai  oleh  Kemenristek DIKTI  melalui  dana  Hibah  Bersaing  atas nama Dr. Tetty Marta Linda, M.Si.

## DAFTAR PUSTAKA
Abd-Alla  MH,  El-Sayed,  Rasmey  M .  2013. Indole-3-Acetic  Acid  (IAA)  Production by Streptomyces  Atrovirens Isolated from  Rhizospheric  Soil  in  Egypt. Journal  of  Biology  and  Earth  Sciences 3(2): 182-1 93.
Akintokun AK, Taiwo MO. 2016 . Comparison  of  Single  Culture  and  The Consortium of Growth-Promoting
Rhizobacteria  from  Three  Tomato ( Lycopersicum
esculentum Mill) Varietes. Advances n Plants & Agriculture Research 5(1): 1-8
Aryantha  NP,  Lestari,  DP,  Pangesti  NPD . 2004.  Potensi  Isolat  Bakteri  Penghasil
IAA  dalam  Peningkatan  Pertumbuhan
Kecambah  Kacang  Hijau  pada  Kondisi Hidroponik.
Jurnal
Mikrobiologi Indonesia 9(2): 1-7.
Bilkay  IS,  Karakoc  S,  Aksoz  N .  2010. Indole-3-Acetic  Acid  and  Gibberellic Acid  Production  in Aspergillus  niger . Turk J Biol 34: 313-318.
Catala    C,  Rose  JKC,  Bennett  AB .  2000 Auxin  Regulated  Genes  Encoding  Cell Wall-Modifying  Proteins  are  Expressed During  Early  Tomato  Fruit  Growth. Plant Physiology 122: 527-534
Deslandes  B,  Garieppy  C,  Houde  A .  2001. Review  of  Microbiol  and  Biochemical Effects of Skatol in Animal Production. Livestock  Production  Science 71:  193- 200.
Gajendran  S,  Rebbeca  JL,  Sharmila  S, Dhanalakshmi  V,  Dam  P,  Ranjeet .
2012.  A  Study  on  the  Indole  Acetic Acid  Production  by Streptomyces spp.
Isolated  from  the  Rhizosphere  Soil  of the Five Flowering Plants. International
Journal  of Agriculture  and  Food Science Technology 3(1): 21-27.
Gangwar M, Dogra S, Gupta UP, Kharwar RN . 2014. Diversity and Biopotential of Endophytic  Actinomycetes  from  Three Medical Plant in India. African Journal of  Microbiology  Research 8(2):  184- 191.
Gopalakrishnan et  al . 2011.  Biocontrol  of
Charcoal-Rot of Sorghum by Actinomycetes  Isolated  from  Herbal Vermicompost. African  Journal  of Biotechnology 10(79): 18142-18152.
Hajri  N.  2016 .  Kemampuan  Aktinomisetes dari Tanah Gambut Riau dalam melarutkan  fosfat  dan  Agen  Biokontrol pada Fungi Fusarium Oxysporum (Schlecht)  dan Colletotrichum  capsici (Syd). Skripsi. Fakultas Matematika dan Ilmu  Pengetahuan  Alam.  Universitas Riau. Pekanbaru
Harikrishnan H, Shanmugaiah V, Balasubramanian N . 2014. Optimization  For  Production  Of  Indole Acetic  Acid  (IAA)  by  Plant  Growth Promoting Streptomyces sp VSMGT1014 Isolated From Rice
Rhizosphere. International  Journal  of Current  Microbiology  And  Applied Sciences 3(8): 158-171.
Kholida  FT,  Zulaika  E .  2015.  Potensi Azotobacter Sebagai Penghasil Hormon Indole  Acetic  Acid (IAA). Jurnal  Sains dan Seni ITS 4(1): 2337-3520.
Linda  TM,  Martina  A,  Febrianti  BL,
Herlinda, Tabri . 2016. Seleksi
Aktinomisetes  Penghasil  Protease  dari Tanah  Gambut  Desa  Langkai,  Siak, Riau. Jurnal  Riau  Biologia 1(10):  62- 66.
Mawarti I . 2017. Seleksi Isolat Aktinomisetes  Asal  Tanah  Gambut Desa Rimbo Panjang Kabupaten
Kampar  dalam  Menghasilkan  Hormon
IAA  ( Indole  Acetic  Acid ).  Skripsi. Fakultas Matematika dan Ilmu
Pengetahuan  Alam.  Universitas  Riau. Pekanbaru.
Meudt WJ dan Gaines TP . 1967. Studies on the  Oxidation  of  Indole-3-Acetic  Acid by Peroxidase Enzymes. I. Colorimetric Determination  of  Indole-3-Acetic  Acid Oxidation  Products. Plant  Physiology (42): 1395-1399.
Muthukumar  A,  Nakkeran  S,  Eswaran  A, Sangeetha  G. 2010.  In  Vitro  of Bacterial  Endophytes  Against  The Chilli  Damping-Off  Pathogen  Pythium aphanidematum. Phytopathol  Mediterr 49(2): 179-186.
Pattern  CL,  Glick  BR .  2002.  Role  of Pseudomonas  putida Indole  Acetic Acid in Development of The Host Plant Root  System. Applied  Environmental Microbiology 68(8): 3795-3801.
Pesrita A, Linda TM, Devi  S. 2017. Seleksi dan  Aktivasi  aktinomisetes  Lokal  Riau pad  Media  Lignoselulosa  Ampas  Tebu. Jurnal Riau Biologia 2(1):8-13.
Spaepen  S  dan  Vabderleyden  J .  2010. Auxin  and  Plant-Microbe  Interactions. Cold  Spring  Harbor  Perspectives  in Biology. Khatolieke Universiteit Leuven 1-13.
Sukmadewi  TK,Suharjono,  Antonius  S. 2015.  Uji  Potensi  Bakteri  Penghasil Hormon  IAA  ( Indole  Acetic  Acid )  dari Tanah  Rhizosfer  Cengkeh  ( Syzigium aromaticum) . Jurnal  Biotropika 3(2): 91-94.
Wahyuni  D,  Linda  TM,  Lestari  W. 2016. Potensi  Bakteri  Pelarut  Fosfat  Asal Tanah Gambut Riau dalam Memproduksi  Hormone  Indole  Acetic Acid  (IAA)  dan  Pengaruhnya  Terhadap
Perkecambahan  Benih  Cabai  Merah ( Capsicum  Annuum L.). Bio-site 2(2): 1-50.
Wahyuni  D .  2016.  Uji  Potensi  Bakteri Pelarut  Fosfat  dalam  Memproduksi Hormon Indole  Acetic  Acid dan  Uji
Perkecambahan Terhadap Tanaman Cabai  Merah  ( Capsicum  Annuum L.). Skripsi.  Fakultas  Matematika  dan  Ilmu Pengetahuan  Alam.  Universitas  Riau. Pekanbaru.
Widawati S, Nurkanto A, Sudiana M . 2008. Aktivitas Pelarutan Fosfat oleh
Aktinomisetes yang  Diisolasi  dari
Waigeo, Kepulauan Raja Ampat, Papua Barat. Biodiversitas 9(2):87-90.