## Potensi Rumput Laut
Eucheuma sp. Terhadap Kepadatan Fitoplankton Chlorella sp.
Ria Azizah 1 *, Indrihastuti Sulistianingtiyas 2 , Delianis Pringgenies 1 dan Siti Rudiyanti 2
1 Jurusan Ilmu Kelautan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Diponegoro 2 Jurusan Perikanan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Diponegoro Jl. Prof. Soedarto, SH. Kampus UNDIP Tembalang, Semarang 50275 Email : riaazizahtn@yahoo.co.id

## Abstrak
Chlorella  sp .  merupakan  sumber  makanan  bagi  ikan  dan  udang.  Untuk menumbuhkan, Chlorella  sp .  maka  diperlukan  media  kultur  dengan  nutrien  yang  baik. Eucheuma  sp.  merupakan  rumput  laut  yang  mengandung  mineral  -  mineral  yang bermanfaat  bagi  pertumbuhan Chlorella  sp .  Pemberian  ekstrak  Eucheuma  sp.  diharapkan dapat mendukung pertumbuhan Chlorella sp . Tujuan dilakukan penelitian untuk mengetahui pengaruh  ekstrak Eucheuma  sp .  terhadap  kepadatan Chlorella  sp .  dan konsentrasi terbaik dari  ekstrak Eucheuma  sp .  yang  menghasilkan  kepadatan Chlorella  sp .  yang  tertinggi. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Januari - Maret 2005 di Laboratorium Bioteknologi dan Eksplorasi  Laut,  Teluk  Awur,  UNDIP,  Jepara  dan  Laboratorium  Jurusan  Perikanan,  UNDIP, Semarang.  Materi  yang  digunakan  yaitu  ekstrak Eucheuma  sp.,  Chlorella  sp .  dan  media kultur.  Metode  yang  digunakan  adalah  eksperimental  laboratories.  Konsentrasi  ekstrak Eucheuma  sp.  yang  digunakan  adalah  :  A  (10  mg/L);  B  (100  mg/L);  C  (200  mg/L);  D  (300 mg/L);  E  (400  mg/L);  F  (500  mg/L);  G  (  tanpa  pemberian  ekstrak  Eucheuma  sp.). Hasil penelitian  menunjukkan  perlakuan  D  (300  mg/L)  menghasilkan  kepadatan Chlorella sp. tertinggi pada puncak populasi, yaitu 6,293 log sel/mL dan pada akhir populasi, yaitu 6,012 log sel/mL dengan konstanta pertumbuhan spesifik sebesar 0,161.
Kata kunci : Kepadatan,  Chlorella, Eucheuma

## Abstract
Chlorella sp. is the source of food to prawn and fish. In order to grow Chlorella sp. so need a culture media with a good nutrient. Eucheuma sp. is a seaweed it cantains benefit minerals  for  the  growth  of  Chlorella  sp.  The  giving  of  Eucheuma  sp.  it  is  to  be  hoped  to support the the growth of Chlorella sp. This research is aimed to know the effect of Eucheuma sp. extract to density of Chlorella sp. and the best concentration of  Eucheuma  sp.  extract produce the highest density of  Chlorella sp. This research was conducted in January – March 2005 at the Laboratory of Biotechnology and Marine Exploration, Teluk Awur, UNDIP, Jepara and Laboratory of Fisheries Department UNDIP, Semarang.   Materials  used  in  this  research consisted of Eucheuma sp. extract,     Chlorella sp. and culture media. This research method used experimental laboratories. The concentration that used in this research : A (10 mg/L); B (100 mg/L); C (200 mg/L); D (300 mg/L); E (400 mg/L); F (500 mg/L); G ( without giving extract of    Eucheuma  sp.).  The  result  of  this  research  showed  that  the  D  treatment  produce  the highest  Chlorella  sp.  density  at  peak  of  population,  that is  6,293  log  sel/mL  and  the  end  of population that is 6,012 log sel/mL with specific growth rate 0,161.
Keyword : Density, Chlorella., Eucheuma

## PENDAHULUAN
Fitoplankton  merupakan  produser primer  pada  rantai  makanan  suatu ekosistem perairan, yang berperan sebagai
makanan alami. Fitoplankton juga berperan  sebagai  penyangga  kualitas  air sekaligus memiliki kemampuan meningkatkan  kandungan  oksigen  terlarut melalui  proses  fotosintesis.  Adiwijaya et.  al ,
(1996)  menambahkan  bahwa  fitoplankton juga  berperan  sebagai  stabilisator  dalam ekosistem perairan karena kemampuannya mengatasi  fluktuasi  parameter  kualitas  air, seperti suhu dan pH.
Chlorella  sp .  adalah  salah  satu  jenis fitoplankton  yang  digunakan  sebagai sumber  makanan  alami.  Pertumbuhan Chlorella  sp .  dipengaruhi  oleh  nutrien- nutrien,  seperti  nitrogen,  phospat  serta unsur-unsur  lain  yang  terkandung  dalam media pemeliharaan.
Dalam
pertumbuhannya,
Chlorella
sp . membutuhkan  media  pemeliharaan  yang tidak  terkontaminasi  organisme  lain  yang bersifat pengganggu.
Eucheuma  sp .  merupakan  rumput laut  yang  memiliki  kandungan  nitrogen yang  tinggi  serta  unsur  -  unsur  lain,  yaitu kalium,  klor,  magnesium,  kalsium,  natrium, belerang , dan yodium (Winarno, 1990).
Selain  memiliki  kandungan  gizi  yang tinggi, Eucheuma  sp .  juga  berpotensi sebagai antibakteri. Hal ini sudah dibuktikan pada hasil penelitian awal yang menunjukkan  ekstrak Eucheuma  sp .  dapat menghambat pertumbuhan bakteri patogen,  yaitu Vibrio  sp .  dan Bacillus  sp . (Ekasari, 2004).
Informasi tentang rumput laut Eucheuma sp .  juga  fitoplankton Chlorella sp .  telah  banyak  dilakukan.  Namun penelitian  mengenai  peranan  rumput  laut Eucheuma sp . terhadap kepadatan fitoplankton Chlorella sp .  belum  banyak dilakukan.
Kandungan  mineral  yang  terdapat pada Eucheuma  sp .  berperan  penting dalam  proses  pertumbuhan Chlorella sp . Pemberian ekstrak
Eucheuma sp . diharapkan dapat meningkatkan pertumbuhan Chlorella sp .
Pola pertumbuhan Chlorella sp .  dapat  dilihat dari  kepadatan  sel Chlorella sp .  pada puncak  populasi  dan  kepadatan  sel Chlorella sp . pada akhir populasi. Selain itu dilakukan penghitungan konstanta pertumbuhan spesifik
Chlorella
sp . Penghitungan  konstanta  pertumbuhan spesifik berguna untuk mengetahui konsentrasi  terbaik  dari    ekstrak Eucheuma
sp . yang menghasilkan kepadatan Chlorella sp . yang optimal.
Faktor lain yang berpengaruh terhadap  pertumbuhan Chlorella sp . adalah  suhu,  pH,  oksigen  terlarut,  dan salinitas.  Tujuan  dilakukannya  pengukuran parameter kualitas air adalah untuk melihat seberapa besar dampak ekstrak Eucheuma  sp .  terhadap  air  media. Selanjutnya  dapat  diketahui  dampak  air media  tersebut  terhadap  pertumbuhan Chlorella sp .  Berdasarkan  hal  tersebut, maka  tujuan  dari  penelitian  adalah  untuk mengetahui  pengaruh  ekstrak  rumput  laut Eucheuma sp. terhadap kepadatan Chlorella  sp .  dan  mengetahui  konsentrasi terbaik  dari  ekstrak  rumput  laut Eucheuma sp . yang menghasilkan kepadatan tertinggi Chlorella sp .

## MATERI DAN METODE
Penelitian  menggunakan  rancangan percobaan  Rancangan  Acak  Lengkap (RAL)  dimana  6  perlakuan  mendapatkan ekstrak Eucheuma sp .  dengan  konsentrasi yang berbeda,  yaitu  :  A  (10 mg/L); B  (100 mg/L);  C  (200  mg/L);  D  (300  mg/L);  E  (400 mg/L);  F  (500  mg/L)  dan    1  perlakuan kontrol G ( 0 mg/L). Pada setiap perlakuan dilakukan  3  kali  ulangan.  Hipotesis  yang diajukan  untuk  mengambil  keputusan sesuai  dengan  tujuan  adalah  sebagai berikut:
H 0 :  Pemberian  ekstrak Eucheuma sp . dengan  konsentrasi  berbeda  tidak menyebabkan    kepadatan    sel Chlorella sp . yang berbeda H 1 :  Pemberian  ekstrak Eucheuma sp . dengan
konsentrasi
berbeda memberikan  kepadatan  sel Chlorella sp . yang berbeda.
Kaidah pengambilan keputusan dengan uji F dari hipotesis tersebut sebagai berikut:
F hitung:
 F tabel , maka terima H 0 dan tolak H 1 > F tabel , maka tolak H 0 dan terima H 1
Materi  penelitian  yang  digunakan adalah ekstrak rumput laut Eucheuma sp ., dan  fitoplankton Chlorella sp .,  serta  air
sebagai
medianya. Chlorella
sp . didapatkan  dari  hasil  kultur  murni  yang tidak  tercampur  oleh  organisme  lain  yang dikoleksi dari Laboratorium Makanan Alami, Balai  Besar  Pengembangan  Budidaya  Air Payau (BBPBAP) Jepara. Chlorella sp . yang dikoleksi  ditempatkan  pada  erlenmeyer volume 500 mL dengan kepadatan 100.000 sel/mL.  Rumput laut Eucheuma  sp . seberat 1  kg  dikoleksi  dari  Pantai  Bandengan, Jepara. Air media yang digunakan adalah air laut steril dengan salinitas 28 o / oo.

## Persiapan peralatan
Sebelum dilakukan penelitian, peralatan yang akan digunakan disterilisasi dengan klorin. Sterilisasi dilaksanakan untuk membersihkan  mikroorganisme  sehingga peralatan  yang  akan  digunakan  dalam penelitian  bersih.  Untuk  menghilangkan sisa-sisa klorin, peralatan dinetralkan menggunakan  natrium  thiosulfat  hingga bau  klorin  hilang.  Sterilisasi  model  ini umumnya  digunakan  untuk  mensterilkan alat-alat  dan  botol  ukur  yang  terbuat  dari gelas (Isnansetyo dan Kurniastuty, 1995).
Penentuan volume sel  Chlorella sp.
Menurut Martosudarmo dan Sabarudin (1983), untuk menghitung volume  sel Chlorella sp .  yang  dibutuhkan, digunakan rumus sebagai berikut  :
Keterangan : V 1 = Volume Chlorella sp .  yang  digunakan untuk penebaran awal (mL)
V 2 = Volume  air  media  yang  akan  ditebar bibit (mL)
N 1 = Jumlah stok Chlorella sp . (sel/mL). N 2 = Jumlah Chlorella sp . yang dikehendaki (sel/mL)
Pembuatan larutan ekstrak Eucheuma sp.
Penelitian ini menggunakan bahan uji berupa  ekstrak Eucheuma  sp .  yang merupakan  hasil  ekstraksi  dari  rumput  laut Eucheuma  sp .  Ekstrak Eucheuma  sp .  yang akan  digunakan  terlebih  dahulu  dilarutkan dalam  air.  Menurut  Wahyuni  (1988),
pembuatan larutan dari ekstrak Eucheuma sp menggunakan rumus sebagai berikut :
V xK Q = P
Keterangan :
Q  = Berat  bahan  yang  akan  dilarutkan (mg)
V  = Volume pelarut (mL)
P  = Volume dosis penggunaan (mL)
K  = Konsentrasi ekstrak Eucheuma sp . yang dikehandaki (mg/L)

## Persiapan air media
Air  media  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  air  laut  yang  steril. Menurut  Isnansetyo  dan  Kurniastuti  (1995), air  laut  yang  akan  digunakan  terlebih dahulu  disaring,  lalu  disterilkan  dengan klorin  sebanyak  60  mg/L  selama  minimal  1 jam.  Untuk  menghilangkan  sisa  –  sisa  klorin dalam air laut, dilakukan penetralan air laut menggunakan  natrium  thiosulfat  sebanyak 20 mg/L. Penetralan dilakukan hingga bau klorin hilang. Pada penelitian ini digunakan media  pemeliharaan  Walne  Isnansetyo dan Kurniastuty (1995)

## Ekstraksi rumput laut
Sampel  rumput  laut Eucheuma sp . seberat  1  kg  yang  dikoleksi  dari  Pantai Bandengan,  Jepara langsung  dibawa  ke Laboratorium  Bioteknologi  dan  Eksplorasi Laut,    Kampus  Teluk  Awur,  UNDIP,    Jepara untuk  diekstraksi.    Sebelum    diekstraksi rumput  laut  terlebih  dahulu  dibersihkan menggunakan  air  untuk  menghilangkan garam  dan  parasit  yang  menempel. Menurut  Taylor  dan  Zheng  (1995) dalam Ekasari  (2004)  setelah  dibersihkan,  rumput laut  diblender  kemudian  direndam  dalam larutan  metanol  selama  24  jam.  Rumput laut  yang  sudah  direndam  kemudian disaring dengan kertas saring. Larutan hasil penyaringan  kemudian  diuapkan  dengan rotavapour pada suhu 30 0 C – 40 0 C.
Proses  ekstraksi  berlangsung  sampai didapatkan  ekstrak Eucheuma sp .  dalam bentuk  pasta.  Penghancuran  rumput  laut dengan blender bertujuan untuk mempermudah
proses penyerapan
N xV 2 2 V = 1 N1
senyawa  bioaktif  ke  dalam  larutan metanol.
Perendaman
menggunakan metanol bertujuan untuk menyerap senyawa  bioaktif  yang  terdapat  pada rumput laut.  (Winarno,1990).

## Penelitian pendahuluan
Penelitian
pendahuluan ini dimaksudkan untuk mencari kisaran konsentrasi  ekstrak Eucheuma sp .  yang akan digunakan sebagai dasar pemberian perlakuan pada penelitian utama. Berdasarkan basis angka 10 deret logaritmik maka konsentrasi ekstrak Eucheuma sp . adalah 0; 0,001; 0,01; 0,1;  1; 10; 100 mg/L.
Pada  penentuan  ambang  apabila dengan  deret  konsentrasi  bahan  uji  0; 0,001;  0,01;  0,1;  1;  10;  100  mg/L  tidak diperoleh  batas  konsentrasi  maksimum pemberian ekstrak Eucheuma sp ., maka uji dilanjutkan  dengan  menambahkan  2 perlakukan  dengan  konsentrasi  ekstrak Eucheuma sp . 500 dan 1000 mg/L.

## Penelitian utama
Hasil penelitian pendahuluan digunakan sebagai acuan dalam melakukan  penelitian  utama.  Perlakuan konsentrasi  ekstrak Eucheuma  sp . yang ditetapkan dalam penelitian utama didapat  dari  hasil  peninjauan  kisaran kepadatan Chlorella  sp .  pada  konsentrasi ekstrak Eucheuma  sp . yaitu  antara konsentrasi  0,001  sampai  konsentrasi  1000 mg/L. Dari penelitian pendahuluan diamati bagaimana kepadatan Chlorella sp . pada masing-masing pemberian konsentrasi ekstrak Eucheuma sp .
Konsentrasi  ekstrak Eucheuma sp . yang  akan  digunakan  untuk  penelitian utama adalah A (10 mg/L); B (100 mg/L); C (200  mg/L);  D  (300  mg/L);  E  (400  mg/L);  F (500 mg/L) ditambah satu perlakuan tanpa pemberian  ekstrak Eucheuma sp .  (  G  ) yang  akan  dijadikan  kontrol  pada penelitian utama.
Pada  setiap  perlakuan  dilakukan  3 kali  ulangan. Pengamatan  terhadap kepadatan Chlorella sp . dilakukan dengan
pengambilan  sampel  setiap  24  jam  sekali selama  12  hari.  Pengambilan  sampel selama 12 hari  berdasarkan asumsi bahwa selama  kurun  waktu  tersebut Chlorella sp. telah  melalui  seluruh  rangkaian  fase pertumbuhannya (Sachlan, 1984).
Setiap  hari  dilakukan  pengambilan sampel  dengan  volume  5  mL  dan  diberi  4 tetes  formalin  4  %  yang  bertujuan  untuk menghambat  pertumbuhan Chlorella  sp . sehingga memudahkan dalam pengamatan dengan mikroskop (Haryanto, 2003). Parameter lain yang diamati adalah suhu air, salinitas, pH, dan oksigen terlarut.

## Penghitungan kepadatan Chlorella sp.
Kepadatan  sel Chlorella sp .  diamati dengan
menggunakan alat
haemocytometer .
Sebelum dimulai penghitungan, haemocytometer dibersihkan dengan air aquades kemudian dikeringkan  dengan  kertas  tissue.  Sampel Chlorella sp .  dikoleksi  dengan  pipet  dan diteteskan pada haemocytometer yaitu di parit  yang  melintang,  kemudian  dipasang gelas  penutup haemocytometer .  Dalam hal  ini,  harus  memperhatikan  posisi  gelas penutup  agar  tidak  timbul  gelembung udara.  Luas  permukaan  bergaris  pada haemocytometer = 1 mm 2 dan kedalamannya  =  0,1  mm,  maka  volume sampel diatas permukaan bergaris = 1 mm 2 x  0,1  mm  =  0,1  mm 3 atau  0,0001  cm 3 atau 0,0001  mL.  Misalkan  jumlah  sel  adalah  N, berarti dalam 0,1 mm 3 terdapat N sel. Jadi dalam 1 cm 3 atau 1 mL jumlah Chlorella sp. adalah   N x 10 4 (Mujiman, 2000).
Penghitungan konstanta pertumbuhan spesifik
Konstanta pertumbuhan spesifik Chlorella sp . dihitung menggunakan rumus Fogg  (1979) dalam Sosiawan  (2004) sebagai berikut :
logwt - logw0 K =
t
Keterangan : K  :  Konstanta pertumbuhan spesifik w t :  Jumlah populasi pada hari ke-t w 0 :  Jumlah populasi pada hari ke-0 t   :  Waktu

## Analisis Data
Data  –  data  yang  diperoleh  selama penelitian  dianalisis  secara  statistik.  Data  – data tersebut terlebih dahulu diuji kenormalan ragamnya dengan uji normalitas Lilieffors
(Sudjana, 1986).
Disamping  pengujian  terhadap  normal tidaknya
distribusi
data, diperlukan
pengujian
terhadap
kesamaan (homogenitas)  data  atau  uji  Bartlet (Arikunto, 1998).
Setelah  itu  dianalisis  dengan  uji  F dengan  taraf  uji  5  %  dan  1  %.  Untuk mengetahui  pengaruh  antar  perlakuan, dilakukan uji ganda Duncan pada taraf uji 5  %  dan  1  %  untuk  mengetahui  perlakuan mana  yang  berbeda  (Steel  and  Torrie (1960) dalam Srigandono (1989)).

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Penelitian pendahuluan
Pada penelitian pendahuluan mengenai  Pengaruh  Ekstrak Eucheuma sp . Terhadap  Kepadatan Chlorella sp .  ini digunakan  9  perlakuan,  yaitu  A  (ekstrak Eucheuma sp .  0,001  mg/L);  B  (ekstrak Eucheuma sp .0,01  mg/L);  C  (ekstrak Eucheuma sp .0,1  mg/L);  D  (ekstrak Eucheuma sp .  1  mg/L);  E  (ekstrak
Eucheuma sp .  10  mg/L);  F  (ekstrak Eucheuma sp .    100  mg/L);  G  (ekstrak Eucheuma sp .  500  mg/L);  H  (ekstrak Eucheuma sp .  1000  mg/L);  I  (tanpa pemberian ekstrak Eucheuma sp .) dengan hasil kepadatan Chlorella sp . terlihat pada tabel  1.  Kepadatan Chlorella sp .  pada penelitian  pendahuluan  tertera  pada Gambar 2 .
Pada  semua  perlakuan,  yaitu  yang diberi ekstrak Eucheuma sp . maupun yang tidak  diberi  ekstrak Eucheuma  sp .  (kontrol) mengalami peningkatan kepadatan Chlorella  sp .  yang  seirama  hingga mencapai  puncaknya  (hari  ke-  5),  setelah melewati  hari  ke-  5,  kepadatan Chlorella sp . mengalami penurunan  (Tabel 1).
Kepadatan Chlorella  sp .  pada puncaknya  di  hari  ke-5  dari  yang  tertinggi sampai  terendah  berturut-turut  adalah perlakuan  F  (100  mg/L)  yaitu  162  x  10 4 sel/mL;  perlakuan  E  (10  mg/L)  yaitu    145  x 10 4 sel /mL; perlakuan D (1 mg/L) yaitu 111 x 10 4 sel /mL; perlakuan C (0,1 mg/L) yaitu 93 x 10 4 sel /mL; perlakuan B (0,01 mg/L) yaitu 75  x  10 4 sel  /mL;  perlakuan  I  (tanpa pemberian  ekstrak Eucheuma  sp .)  yaitu  63 x  10 4 sel  /mL;  perlakuan  A  (0,001  mg/L) yaitu  42  x  10 4 sel  /mL;  perlakuan  G  (500 mg/L) yaitu 36 x 10 4 sel /mL dan perlakuan H  (1000  mg/L)  yaitu  33  x  10 4 sel  /mL (Gambar
1).
Tabel 1 . Kepadatan Harian Chlorella sp . pada Penelitian Pendahuluan( x 10
4 sel/mL) Perlakuan Hari ke- A B C D E F G H I 0 10 10 10 10 10 10 10 10 10 1 27 23 25 28 50 66 23 21 24 2 29 27 33 39 69 82 25 23 30 3 32 39 45 51 85 102 27 23 36 4 40 52 70 81 120 135 33 29 45 5 42 75 93 111 145 162 36 33 63 6 37 48 60 66 90 111 28 25 44 7 23 25 24 27 60 70 21 15 24
Keterangan :
A  : Ekstrak Eucheuma sp. 0,001 mg/L B   : Ekstrak Eucheuma sp. 0,01 mg/L C  : Ekstrak Eucheuma sp. 0,1 mg/L D  : Ekstrak Eucheuma sp. 1 mg/L E   : Ekstrak Eucheuma sp. 10 mg/L
F   : Ekstrak Eucheuma sp. 100 mg/L G   : Ekstrak Eucheum a sp. 500 mg/L H   : Ekstrak Eucheuma sp. 1000 mg/L I   : Ekstrak Eucheuma sp. 0 mg/L
0 20 40 60 80 100 120 140 160 180 0 1 2 3 4 5 6 7 Hari ke- Kep a da tan C lo rel la sp. ( x10 4 sel/mL) A (0.001 mg/L) B (0.01 mg/L) C (0.1 mg/L) D (1mg/L)
E (10 mg/L)
F (100 mg/L) G (500 mg/L) H (1000 mg/L) I (0 mg/L)
Gambar 1. Kepadatan Harian Chlorella sp pada penelitian pendahuluan 0 1 2 3 4 5 6 7 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 Hari ke- Kep a da tan C h lo rel la sp . (lo g sel /mL) A(10 mg/L) B(100 mg/L) C(200 mg/L) D(300 mg/L) E(400 mg/L) F(500 mg/L) G(0 mg/L)
Gambar 2. Grafik Pertumbuhan Chlorella sp . pada Penelitian Utama
Pertumbuhan Chlorella sp.
Pada  penelitian  utama  digunakan  7 perlakuan,  yaitu  A  (ekstrak Eucheuma sp . 10  mg/L);  B  (ekstrak Eucheuma sp .100 mg/L);  C  (ekstrak Eucheuma sp .    200 mg/L); D (ekstrak Eucheuma sp . 300 mg/L); E  (ekstrak Eucheuma sp .  400  mg/L);  F (ekstrak Eucheuma sp . 500 mg/L); G (tanpa pemberian ekstrak Eucheuma sp .).
Kepadatan  Chlorella  sp . pada  puncak populasi
Kepadatan Chlorella  sp .  pada puncak  populasi  tertera  pada  Gambar  3. Kepadatan Chlorella sp . mencapai puncaknya  pada  hari  ke-  8  dengan  hasil dari  yang  tertinggi  sampai  terendah berturut-turut  adalah  perlakuan  D  (300
mg/L) = 6,293 log sel /mL; perlakuan C (200 mg/L) =  6,235 log sel /mL; perlakuan B (100 mg/L)  =  6,154  log  sel  /mL;  perlakuan  A  (10 mg/L) = 6,111 log sel /mL; perlakuan E (400 mg/L)  =  6,079  log sel  /mL  perlakuan  F  (500 mg/L)  =  6,915  log  sel  /mL;    perlakuan  G (tanpa pemberian ekstrak Eucheuma sp) = 6,904 log sel /mL  (Gambar 3).
Hasil  pengujian    data  kepadatan Chlorella sp . pada puncak populasi  dapat dilihat pada Lampiran 2, 3, 4, dan 5. Hasil uji normalitas  dan  homogenitas  menunjukkan data  menyebar  normal  dan  homogen. Analisis  ragam  data  kepadatan Chlorella sp .  pada  puncak  populasi  dapat  dilihat pada Tabel 2.
Hasil  analisis  ragam  data  kepadatan Chlorella  sp .  pada  puncak  populasi
menunjukkan  bahwa  pemberian  ekstrak Eucheuma  sp .  memberikan  perbedaan sangat nyata terhadap jumlah sel Chlorella sp .  dengan  hasil  F  hitung  lebih  besar
daripada F tabel pada taraf kepercayaan 99%.  Untuk  mengetahui  perbedaan  antar perlakuan  dapat  dilihat  dari  Uji  Ganda Duncan pada Tabel 3.
5.7 5.8 5.9 6 6.1 6.2 6.3 Juml ah Se l Chl orell a sp. (l og sel/ m L) A B C D E F G
Perlakuan
Gambar 3. Kepadatan Sel Chlorella sp Pada Puncak Populasi
Tabel 2. Analisis Ragam Data Kepadatan Chlorella sp . pada Puncak Populasi
SK db JK KT Fhitung Ftabel 0.05 0.01 Perlakuan 6 0.393989 0.0656648 53.70415* 2.85 4.46 Galat 14 0.017118 0.0012227 Jumlah 20 0.411107 0.0668875
* F hitung  >  F tabel  berbeda sangat nyata
Tabel 3 . Uji Ganda Duncan Data Kepadatan Chlorella sp . pada Puncak Populasi
Perlakuan  Nilai Tengah Selisih D 6.2930 D C 6.2353 0.0577 C B 6.1543 0.1387** 0.0810 B A 6.1133 0.1797**  0.1220** 0.0410 A E 6.0793 0.2137**  0.1560** 0.0750 0.0340 E F 5.9157 0.3773**  0.3196**  0.2386**  0.1976**  0.16360** F G 5.9043 0.3887**  0.3310**  0.2500**  0.2090** 0.1750**  0.01140  G
**  =  berbeda sangat nyata

## Kepadatan  Chlorella  sp.  pada  akhir populasi
Pada  akhir  populasi  perlakuan  D mempunyai  jumlah  sel  yang  paling  tinggi dibandingkan perlakuan yang lain (Gambar 4).
Hasil analisis data kepadatan Chlorella sp . pada akhir menunjukkan data menyebar  normal  dan  bersifat  homogen
Analisis  ragam  data  kepadatan Chlorella sp . pada akhir populasi terlihat pada Tabel 4.
Hasil  analisis  ragam  menunjukkan perbedaan  jumlah  sel Chlorella  sp .  yang sangat nyata pada akhir populasi.
Perbedaan  jumlah  sel Chlorella  sp . pada setiap perlakuan dapat dilihat pada uji Ganda Duncan
5.3 5.4 5.5 5.6 5.7 5.8 5.9 6 6.1 Jum la h Sel C hlo rel la s p (lo g s el /m L) A B C D E F G
Perlakuan
Gambar 4. Kepadatan Sel Chlorella sp pada Akhir Populasi
Tabel 4 . Analisis Ragam Data Kepadatan Chlorella sp . pada Akhir Populasi
SK db JK KT Fhitung Ftabel 0.05 0.01 Perlakuan 6 0.495084 0.082514 19.03585* 2.85 4.46 Galat 14 0.060685 0.004335 Jumlah 20 0.55577 0.086849
* F hitung  >  F tabel  berbeda sangat nyata
Tabel 5. Uji Ganda Duncan Data Kepadatan Chlorella sp . pada Akhir Populasi
Perlakuan  Nilai Tengah Selisih D 6.0123 D C 5.9590 0.05330 C B 5.9017 0.11060 0.0573 B E 5.7950 0.21730**  0.1640**  0.10670 E A 5.7563 0.25600**  0.2027**  0.14540 0.03870 A G 5.6767 0.33560**  0.2823**  0.22500** 0.11830 0.07960 G F 5.5403 0.47200**  0.4187**  0.36140**  0.25470**  0.21600**  0.13640 F
**  =  berbeda sangat nyata
Konstanta pertumbuhan spesifik Chlorella sp.
Perlakuan D  (300 mg/L) merupakan perlakuan  yang  menghasilkan  kontanta pertumbuhan spesifik yang terbaik (Gambar 5).  Data konstanta pertumbuhan spesifik  menyebar  normal  dan  bersifat homogen.  Analisis  ragam  data  konstanta pertumbuhan  spesifik  dapat  dilihat  pada Tabel 6.
Hasil  analisis  ragam  menunjukkan konstanta pertumbuhan spesifik Chlorella
sp .  tidak  memiliki  perbedaan  nyata  antar perlakuan.  Nilai  konstanta  pertumbuhan antar perlakuan tetap memiliki perbedaan, namun  karena  selisih  nilainya  kecil  maka pada  taraf  kepercayaan  95%  tidak terdapat  perbedaan  yang  nyata  antar perlakuan.

## Kualitas air
Saat penelitian dilakukan
pengukuran  kualitas  air  dengan  hasil  yang dapat dilihat pada Tabel 7.
0 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 0.12 0.14 0.16 0.18 Ko n stant a Pe rtu m bu h an C h lo rell a sp.
(lo g se l/ m L) A B C D
E F
G

## Perlakuan
Gambar 5. Konstanta Pertumbuhan Spesifik Chlorella sp
Tabel 6. Analisis Ragam Data Konstanta Pertumbuhan Spesifik Chlorella sp .
SK db JK KT Fhitung Ftabel 0.05 0.01 Perlakuan 6 0.006081 0.001014 0.03636 2.85 4.46 Galat 14 0.390259 0.027876 Jumlah 20 0.396341 0.028889
Tabel 7 . Data Pengukuran Parameter Kualitas Air
Parameter Hasil Pengukuran Pustaka Suhu (º C) 28 – 29 25 – 35 (Borowitzka dan Borowitzka,1992) Oksigen terlarut (mg/L) 3,5 – 4 1 – 5  (Boyd, 1979) Salinitas ( o / oo ) 28 20 – 28 (Borowitzka dan Borowitzka,1992) pH 8 7,5 – 8,5 (Taw, 1990)
Pada
penelitian pendahuluan,
puncak  kepadatan Chlorella sp .  terjadi pada hari ke-5, berbeda dengan penelitian utama yang mencapai puncaknya  pada  hari  ke-8.  Hal  ini  terjadi karena  adanya  perbedaan  kemampuan Chlorella sp . dalam  menyesuaikan  diri dengan lingkungannya. Tingginya kepadatan sel Chlorella sp . pada hari ke-5 menyebabkan peningkatan kompetisi dalam memanfaatkan nutrien yang tersedia.  Keterbatasan  nutrien  dan  ruang gerak menyebabkan kepadatan sel Chlorella sp .  mulai  mengalaki  penurunan sejak hari ke- 6.
Pertumbuhan Chlorella sp.
Hasil  penelitian  ini  memperlihatkan bahwa pemberian ekstrak Eucheuma sp . memberikan  pengaruh  positif  terhadap kepadatan Chlorella sp .  Hal  ini  dapat dilihat  dari    peningkatan  jumlah  sel  yang signifikan  dibanding  dengan  perlakuan yang  tidak  diberi  ekstrak Eucheuma sp . (kontrol).  Peningkatan  kepadatan  sel merupakan  bagian  dari  pertumbuhan karena Salisbury and Ross (1992) menyatakan  bahwa  pertumbuhan  berarti penambahan ukuran dalam bobot, volume, dan jumlah sel.
Kepadatan Chlorella sp.  pada  puncak populasi
Pada  penelitian  utama,  semua perlakuan  mencapai  puncak  kepadatan pada  hari  ke-  8.  Hal  ini  didukung  dengan kondisi  media  pemeliharaan  yang  baik. Perlakuan  D  (ekstrak Eucheuma sp .  300 mg/L) mempunyai kepadatan Chlorella sp . yang  tertinggi  yaitu  6,293  log sel  /mL. Kepadatan tersebut lebih tinggi dibandingkan dengan perlakuan A (ekstrak Eucheuma sp .  10  mg/L)  sebesar  6,111  log sel/mL,  perlakuan  B  (ekstrak Eucheuma sp .100  mg/L)  sebesar  6,154  log sel/mL, perlakuan  C  (ekstrak Eucheuma sp .200 mg/L) sebesar 6,235 log sel/mL, perlakuan E (ekstrak Eucheuma sp .  400  mg/L)  sebesar 6,079  log sel/mL,  perlakuan  F  (ekstrak Eucheuma sp .500  mg/L)  sebesar  5,915  log sel  /mL,  dan  perlakuan  G  (tanpa pemberian  ekstrak Eucheuma sp .)  sebesar 5,904  log sel  /mL.  Hal  ini  menunjukkan
perlakuan  D  memiliki  media  pemeliharaan yang  lebih  baik  daripada  perlakuan  yang lain,  dengan  kualitas  air  yang  memadai dan nutrien yang ada dapat dimanfaatkan dengan optimal.
Unsur – unsur pada ekstrak Eucheuma sp ., yaitu natrium, kalium, kalsium, magnesium, fosfor, dan  belerang terdapat jumlah yang optimal. Penambahan unsur – unsur tersebut dapat meningkatkan kandungan  nutrien  media  pemeliharaan sehingga  memacu  aktifitas  enzim  pada Chlorella sp .,  terutama  untuk  proses fotosintesis  dan  pembentukan  protein. Kondisi  ini  mendukung  pertumbuhan Chlorella sp . dapat mencapai titik tertinggi.
Selain  memiliki  kandungan  unssur  – unsur  yang  dapat memacu pertumbuhan fitoplankton,  ekstrak Eucheuma sp .  juga berpotensi
sebagai
antibakteri.
Peningkatan  kepadatan Chlorella sp . terjadi
karena
pemberian ekstrak
Eucheuma sp . yang
mempunyai kemampuan
sebagai
antibakteri.
Kemampuan sebagai antibakteri bermanfaat menyingkirkan mikroorganisme yang  dapat  menghambat  pertumbuhan
Chlorella
sp . Dengan demikian
pertumbuhan
Chlorella sp . dapat berlangsung dengan maksimal (Anonymous, 2004).
Kepadatan Chlorella sp.  pada  akhir populasi
Setelah mencapai puncak pada hari ke-  8,  kepadatan Chlorella sp .  mengalami penurunan.  Jumlah  sel Chlorella sp .  mulai mengalami  penurunan  sejak  hari  ke-  9 sampai  hari  ke-  12.  Pada  puncak  populasi terjadi  kompetisi  dalam  pemanfaatan nutrien  dan  ruang.  Ada  sel Chlorella sp . yang  mampu  bertahan  tetapi  ada  juga yang  kalah  bersaing.  Persaingan  tersebut menyebabkan  kematian  sel Chlorella sp . sehingga  terjadi  penurunan  jumlah  sel Chlorella sp .  pada akhir populasi.
Konstanta  pertumbuhan  spesifik Chlorella sp.
Semua  perlakuan  pada  penelitian utama dengan pemberian ekstrak
Eucheuma sp .  antara  10  mg/L  sampai  500 mg/L  menghasilkan  kepadatan Chlorella sp .  yang  lebih  tinggi  daripada  kepadatan awal  sebesar  100.000  sel/mL.  Selisih  antara jumlah  sel  pada  puncak  populasi  dan jumlah sel pada awal populasi menghasilkan nilai konstanta pertumbuhan spesifik.
Konstanta pertumbuhan
spesifik Chlorella sp .  pada  perlakuan  A  (ekstrak Eucheuma sp .10  mg/L)  sebesar  0,139.  Nilai tersebut semakin meningkat pada perlakuan  B  (ekstrak Eucheuma sp.  100 mg/L)  sebesar  0,144  dan    perlakuan  C (ekstrak Eucheuma sp.  200  mg/L)  sebesar 0,154.  Konstanta  pertumbuhan  spesifik terbaik  terjadi  pada  perlakuan  D  (ekstrak Eucheuma sp.  300  mg/L)  yaitu  sebesar 0,161.  Diduga  bahwa  pemberian  ekstrak Eucheuma sp.  sebesar  300  mg/L  dapat menekan  bakteri  dan  mikroorganisme patogen yang dapat menghambat pertumbuhan Chlorella sp .
Ekstrak Eucheuma sp.  melepaskan karaginan  ke  dalam  air  media    yang selanjutnya dapat menghancurkan bakteri dengan  cara  mempengaruhi  dinding  sel kemudian  masuk  ke  dalam  inti  sel  bakteri dan  mikroorganisme.  Hal  inilah  dapat menghambat  pertumbuhan  bakteri  dan mikroorganisme patogen (Prentis, 2000).
Konstanta pertumbuhan spesifik pada  perlakuan  E  (ekstrak Eucheuma sp . 400  mg/L)  adalah  0,135  dan  perlakuan  F (ekstrak Eucheuma sp.  500  mg/L)  sebesar 0,114.  Data  ini  menunjukkan  penurunan apabila  dibandingkan  dengan  perlakuan D    (ekstrak Eucheuma sp.  300  mg/L). Perlakuan  G  (tanpa  pemberian  ekstrak Eucheuma sp.)  konstanta  pertumbuhan spesifik  sebesar  0,113  yang  berarti  lebih tinggi  daripada  perlakuan  F  (  pemberian ekstrak Eucheuma sp.  500  mg/L).  Hal  ini terjadi  karena Chlorella sp.  memerlukan adaptasi  pada  media  yang  telah  diberi ekstrak Eucheuma sp.  dengan  konsentrasi yang  tinggi.  Diduga  terjadi  kelebihan kandungan mineral pada media pemeliharaan  pada  perlakuan  F  dan  G, dimana kondisi tersebut berpotensi menimbulkan dominasi organisme lain (Fox, 1987).

## Kualitas air
Kualitas  air  media  harus  senantiasa dikontrol  karena  menurut  Laode  (1991) berbagai faktor, baik yang bersifat internal (jenis  dan  umur)  maupun  yang  bersifat eksternal  (suhu,  salinitas,  pH  air,  intensitas cahaya, ruang, waktu serta cara penanganan) dapat
mempengaruhi
pertumbuhan fitoplankton.
Lobban
and Wynee (1985) menyatakan  suhu  akan  mempengaruhi tingkat  difusi  dan  metabolisme  sel. Kenaikan suhu menyebabkan metabolisme berjalan  lebih  cepat.  Pada  pengukuran selama penelitian didapatkan kisaran suhu antara 28ºC - 29ºC. Kisaran tersebut sangat baik  bagi  Chlorella  sp.,  dimana  suhu optimum  untuk  pertumbuhannya  antara 25ºC  -  35ºC  dengan  suhu  maksimal  37ºC (Borowitzka and Borowitzka, 1992).
Penentuan  salinitas  berfungsi  untuk menciptakan  kondisi  lingkungan  yang mendukung  proses  metabolisme  dan tekanan  osmotik.  Menurut  Borowitzka  and Borowitzka  (1992)  salinitas  yang  optimal bagi  pertumbuhan  Chlorella  sp.  adalah antara  20 o / oo -28 o / oo. Salinitas  yang digunakan  pada  penelitian  ini  adalah 28 o / oo sehingga  layak  bagi  pertumbuhan Chlorella sp.
Menurut  Baldwin  and  Mandelsshon (2004) peningkatan kepadatan Chlorella sp. tergantung pada kadar oksigen terlarut pada media pemeliharaan. Kisaran oksigen  terlarut  pada  penelitian  adalah antara  3,5  mg/L  –  4mg/L.  Kisaran  tersebut layak  bagi  pertumbuhan Chlorella  sp . karena  Boyd  (1979)  menyatakan  kadar oksigen terlarut yang baik untuk pertumbuhan Chlorella sp. antara 1 mg/L – 5 mg/L.
Air yang mempunyai pH antara 7,5 – 8,5  mendukung  kehidupan  fitoplankton. Pada  umumnya  dalam  jangkauan  pH  itu pertumbuhan fitoplankton tidak terganggu. (Taw,  1990).  pH  yang  didapatkan  pada penelitian  ini  adalah  8.  Dengan  demikian pH tersebut masih layak bagi perkembangan  fitoplankton,  dalam  hal  ini Chlorella sp .

## KESIMPULAN
Dari  penelitian  mengenai  pengaruh ekstrak Eucheuma sp . terhadap kepadatan Chlorella sp . ini  dapat  diambil  kesimpulan, Ekstrak Eucheuma sp .  dengan  berbagai konsentrasi  memberikan  kepadatan  sel Chlorella sp . yang berbeda.
Kepadatan sel
Chlorella
sp . cenderung  mengalami  peningkatan  mulai dari perlakuan A (ekstrak Eucheuma sp . 10 mg/L),  perlakuan  B  (ekstrak Eucheuma sp . 100 mg/L), perlakuan C (ekstrak Eucheuma sp .  200  mg/L)  hingga  perlakuan  D  (ekstrak Eucheuma sp .  300  mg/L).  Perlakuan  D (ekstrak Eucheuma sp . 300 mg/L) menghasilkan  kepadatan  sel Chlorella sp . yang  tertinggi  pada  puncak  populasi (6,923 log sel/mL) dan akhir populasi (6,012 log sel/mL) dengan konstanta pertumbuhan  spesifik Chlorella sp .  sebesar 0,161.

## DAFTAR  PUSTAKA
Adiwijaya  dan  Raharjo.  1998.  Pengaruh
Penggunaan Nutrilake Terhadap
Pertum  buhan  Udang  Pada  Budidaya Sistem Semi Intensif. Direktorat Jenderal Perikanan  Balai  Budidaya  Air  Payau. Jepara.  46 hlm.
Arikunto,  S.  1998.  Prosedur  Penelitian. Rineka Cipta. Jakarta. 378 hlm.
Anonymous. 2004. Algae-Kelp-Seaweed for
Industrial,  Nutritional,  and  Agricultural Use. http://www.algae@safariseeds. com. 4 pp.
Borowitzka,  M  and  Borowitzka,  L.  1992. Microalgae Biotechnology. Cambridge University Press. 168 pp.
Baldwin,  A.H.  and  Mandelsshon  ,I.A,.  2004. The Effect of Salinity Level on the Photosynthetic. Aquatic Botany. 4 pp. Ekasari,  N.  L.  2004.  Uji  Potensi  Antibakteri Beberapa  Ekstrak  Rumput  Laut  Yang Terdapat
Di Pantai Bandengan
Jepara.  Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu Kelautan, Universitas Diponegoro. Semarang. 68 hlm. Fox,  J.M.  1987.  Teknik  Budidaya  Intensif Dalam Teknologi Pembenihan Udang. Gajah Mada University Press. Yogyakarta (Diterjemahkan oleh Gajah Mada University Press). 52 hlm.
Isnansetyo,  A.  dan  Kurniastuty.  1995.  Teknik Kultur  Phitoplankton  dan  Zooplankton. Kanisius. Yogyakarta. 116 hlm.
Mujiman,  A.  2000.  Makanan  Ikan.  Penebar Swadaya. Jakarta. 190 hlm.
Laode,  M.A.  1991.  Budidaya  Rumput  Laut. Kanisius. Jakarta. 128 hlm.
Lobban,  J.C.  and  Wynee,  M.J.  1985.  The Biology  of  The  Seaweeds.  Blackwell Science Publication. London.
Prentis,  S.  2000.  Bioteknologi.  Erlangga. Jakarta. 135 hlm.
Taw, N.  1990. Petunjuk Pemeliharaan Kultur Murni  dan  Massal  Mikroalga.  Proyek Pengembangan  Budidaya  Udang.
Jepara (Diterjemahkan oleh B. Martosudarmo dan I. Wulani). 30 hlm. Srigandono, B. 1989. Rancangan Percobaan. Fakultas Peternakan, Universitas Diponegoro. Semarang. 100 hlm.
Salisbury and Ross. 1992. Fisiology Tumbuhan.  Penerbit  Institut  Teknologi Bandung. Bandung.
Sosiawan,  T.  G.  2004.  Pengeruh  Berbagai Tingkat  Konsentrasi  Kaporit  Terhadap Pertumbuhan  Kuantitatif Chlorella sp. Universitas  Diponegoro,  Semarang.  58 hlm.
Sudjana.  1986.  Desain  dan  Analisa Eksperimen. Tarsito. Bandung. 474 hlm. Sachlan,  M.  1984.  Planktonologi.  Fakultas Peternakan  dan  Perikanan.  Universitas Diponegoro. Semarang. 117 hlm.
Winarno,  F.G.  1990.  Teknologi  Pengolahan Rumput  Laut.  Pustaka  Sinar  Harapan. Jakarta. 101 hlm.
Wahyuni,  S.  1988.  Laporan  Kegiatan
Training Alga UNDP-FAO. Balai
Budidaya Air Payau. Jepara. 17 hlm.