BioEksakta: Jurnal Ilmiah Biologi Unsoed Volume 1, Nomor 2 (2019): 83-90 E-ISSN: 2714 - 8564
Induksi Perakaran Talas Satoimo ( Colocasia esculenta (L.) Schott var. antiquorum ) dengan Jenis dan Konsentrasi Auksin yang Berbeda Secara In Vitro

## Lia Yulianasari*, Sugiyono dan Lucky Prayoga
Fakultas Biologi, Universitas Jenderal Soedirman Jalan dr. Suparno 63 Purwokerto 53122 *Email: liayulianasr@gmail.com
Rekam Jejak Artikel:
Diterima :  28/08/2019
Disetujui :  30/10/2019

## Abstract
Satoimo  ( Colocasia  esculenta (L.)  Schott  var. antiquorum )  is  one  type  of  taro  commonly called Japanese taro. Japan is the largest satoimo consumer country in the world, which uses it as a staple food other than rice. The development of large quantities of satoimo seedlings can be carried out in vitro . One of the most important steps in in vitro culture is the formation of a good  rooting  system.  A  well-rooted  plantlet  will  increase  the  success  of  its  acclimatization from in vitro conditions to an in vivo environment. This study has been conducted with a view to  study  the  effect  of  kind  and  concentration of  auxin,  as  well  as  to determine  best  the  kind and concentration of auxin on satoimo taro rooting in in vitro culture. This research has been carried  out  experimentally  in  a  split-plot design.  The  main  plots  were  the  kind  of  auxin  (A) which include IAA, IBA and NAA. The sub-plots were auxin concentrations (K) consisted 4 levels:  0;  3;  6;  and  9  µM.  Each  treatment  combinations  were  repeated  three  times.  The variables observed were satoimo rooting with the parameters measured: root emergence time, number  of  roots,  number  of  shoots,  and  number  of  leaves.  The  data  obtained  were  analyzed using an analysis of variance (ANOVA) with an error level of 5%. The analysis result which showed  a  significant  effect  was  subsequently  analyzed  using  Least  Significant  Difference (LSD)  test  at  95%  level  of  confidence.  The  results  showed  that  the  use  of  IAA  at  a concentration of 3 µM produced the best rooting of satoimo taro.
Keywords : Auxin, Rooting Induction, Satoimo

## Abstrak
Satoimo ( Colocasia esculenta (L.) Schott var. antiquorum ) adalah salah satu jenis talas yang biasa  disebut  talas  Jepang.  Jepang  merupakan  negara  konsumen  satoimo  terbesar  di  dunia, yang  menggunakannya  sebagai  makanan  pokok  selain  beras.  Pengembangan  bibit  satoimo dengan jumlah yang banyak dapat dilakukan secara in vitro . Salah satu tahapan penting dalam kultur in  vitro adalah  pembentukan  sistem  perakaran  yang  baik.  Tanaman  utuh  ( plantlet ) dengan sistem perakaran yang baik akan meningkatkan keberhasilan aklimatisasi dari kondisi in  vitro ke  lingkungan in  vivo .    Penelitian  ini  dilakukan  dengan  tujuan  untuk  mempelajari pengaruh jenis dan konsentrasi auksin, serta menentukan jenis dan konsentrasi auksin terbaik pada  perakaran  talas  satoimo  dalam  kultur in  vitro .  Penelitian  ini  dilakukan  secara eksperimental  dengan  rancangan  petak  terpisah  ( split-plot  design ).    Sebagai  petak  utama adalah  jenis  auksin  (A)  yang  meliputi  IAA,  IBA  dan  NAA.  Sebagai  anak  petak  adalah konsentrasi auksin (K) yang digunakan dan terdiri atas 4 taraf yaitu 0; 3; 6; dan 9 µM. Setiap kombinasi perlakuan diulang 3 kali. Variabel yang diamati adalah perakaran satoimo dengan parameter  yang  diukur  meliputi  waktu  kemunculan  akar,  panjang  akar,  jumlah  akar,  jumlah tunas, dan jumlah daun. Data yang diperoleh dianalisis dengan analisis of variance (ANOVA) dengan  tingkat  kesalahan  5%.    Hasil  analisis  yang  menunjukkan  pengaruh  perlakuan  yang nyata,  dilanjutkan  dengan  uji  Beda  Nyata  Terkecil  (BNT)  dengan  tingkat  kepercayaan  95%. Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  penggunaan  IAA  dengan  konsentrasi  3  µM menghasilkan pengaruh terbaik untuk perakaran talas satoimo.
Kata kunci : auksin, induksi perakaran, satoimo

## PENDAHULUAN
Talas  merupakan  tanaman  herba  yang tergolong  dalam  jenis  umbi-umbian  dari  famili Araceae.  Satoimo  adalah  salah  satu  jenis  talas yang  biasa  disebut  talas  Jepang.  Di  Indonesia, pertama kali satoimo dikenal pada masa pendudukan  Jepang.  Satoimo  oleh  masyarakat  di Toraja  disebut  talas  bithek  dan  di  Bali  dikenal dengan  nama  keladi  salak  (Laosa et  al .,  2016).
Produksi bibit  satoimo  secara konvensional  sering terkendala  keterbatasan  lahan  dan  iklim  tidak menentu,  sehingga  produksi  menurun.  Salah  satu upaya  untuk  meningkatkan produksi bibit satoimo dapat  dilakukan  dengan  kultur in  vitro (Seameo, 2007).
Tahapan  penting  dalam  perbanyakan  bibit secara in  vitro adalah  terbentuknya  sistem perakaran  yang  baik.  Perakaran  yang  baik
merupakan  salah  satu  kunci  keberhasilan  dalam perbanyakan  tanaman  secara in  vitro .  Menurut Mokhamad  (2013),  pembentukan  akar  dapat dirangsang  dengan  adanya  nutrisi  hara  (makro- mikro)  dan  vitamin.  Selain  itu,  penggunaan  zat pengatur tumbuh (ZPT) akan merangsang pembentukan akar.
Jenis  ZPT  yang  umum  digunakan  untuk induksi  perakaran  secara in  vitro yaitu Indole-3- Acetic  Acid (IAA), Napthalene  Acetic  Acid (NAA),  dan Indole-3-Butyric  Acid (IBA)  pada konsentrasi 2 - 10 µM (Rostiana & Seswita, 2007). Hutami  &  Purnamaningsih  (2013)  menunjukkan bahwa  akar  talas  ( C.  esculenta var. antiquorum ) berkembang  lebih  baik  dalam  media  MS  dengan IAA  0,5  mg/l,  dibandingkan  0,5  mg/l  NAA. Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mempelajari pengaruh  jenis  dan  konsentrasi  auksin  serta menentukan  jenis  dan  konsentrasi  auksin  terbaik pada induksi perakaran talas satoimo dalam kultur in vitro .

## MATERI  DAN METODE
Bahan  yang  digunakan  adalah  eksplan  talas satoimo hasil kultur yang diperoleh dari SEAMEO BIOTROP  Bogor,  media  Murasshige  &  Skoog (MS-1962), Indole-3-Acetic Acid (IAA),
Napthalene  Acetic  Acid  (NAA),  Indole-3-Butyric Acid (IBA), 6-Benzylaminopurine (BAP).
Penelitian  termasuk  eksperimental  dengan rancangan  petak  terpisah  (split-plot  design). Sebagai  petak  utama  adalah  jenis  auksin  (A), terdiri  dari  3  taraf  meliputi  IAA,  IBA  dan  NAA. Sedangkan, sebagai anak petak adalah konsentrasi auksin (K), terdiri dari 4 taraf yaitu 0 µM, 3 µM, 6 µM,  dan  9  µM.  Setiap  kombinasi  perlakuan dilakukan  pengulangan  sebanyak  3  kali,  sehingga diperoleh  36  unit  percobaan.  Variabel  yang diamati adalah perakaran satoimo dengan parameter yang diukur meliputi waktu kemunculan akar, panjang akar, jumlah akar, jumlah tunas, dan jumlah daun.
Talas satoimo disubkultur pada media BAP 5 µM  kemudian  diblotting  dan  dipotong  dengan ukuran  1  cm,  untuk  inokulasi  ke  media  baru. Masing-masing  botol  berisi  3  eksplan.  Inkubasi pada  penyinaran  lampu  TL  selama  12  hari. Eksplan  yang  telah  disub-kultur  selama  12  hari dipindahkan ke media perlakuan. Satu botol kultur berisi  1  eksplan,  kemudian  diinkubasi  terang  24 jam pada suhu 24oC selama 8 minggu.
Pengukuran  parameter  dilakukan  pada  akhir penelitian  (8  MST),  meliputi:  waktu  kemunculan akar, panjang akar, jumlah akar, jumlah tunas dan jumlah  daun.  Jumlah  total  tunas,  akar,  dan  daun tanaman dihitung, kemudian dicatat dan dilakukan analisis  data.  Panjang  akar  diukur  menggunakan milimeter  block  dan  dicatat.  Waktu  kemunculan akar  diamati  setiap  3  hari.  Data  yang  diperoleh dianalisis dengan Analysis of Variance (ANOVA)
pada  tingkat  kesalahan  5%,  dan  dilanjutkan dengan  uji  Beda  Nyata  Terkecil  (BNT)  dengan tingkat kepercayaan 95%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Eksplan  menunjukkan  respon  perkembangan setelah  8  minggu  masa  tanam,  jumlah  akar bertambah, pemanjangan akar, pembentukam daun dan  tunas  pada  seluruh  perlakuan.  Evans  et  al. (1981)  menyatakan  suatu  jaringan  dikatakan tumbuh  apabila  terjadi  penambahan  massa  atau ukuran jaringan menjadi lebih besar. Pertumbuhan eksplan  terbaik  dari  perlakuan  IAA  (Gambar  1A) dan  IBA  (Gambar  1B),  namun  pertumbuhan eksplan pada perlakuan NAA (Gambar 1C) kurang baik.
Gambar  1. Pertumbuhan  talas  satoimo  umur  8 MST: (A) IAA (B) IBA (C) NAA
Hal  ini  diduga  terjadi  karena  eksplan mengalami  browning.  Menurut  Hutami  (2008), konsentrasi  NAA  yang  tinggi  dapat  menimbulkan efek  toksik,  sehingga  memicu  tanaman  menjadi stress  yang  menyebabkan  peningkatan  aktivitas enzim  fenilalanin  amonia  liase  (PAL)  yang berpengaruh terhadap terjadinya browning. Browning  adalah  peristiwa  dimana  tanaman mengeluarkan pigmen berwarna coklat kehitaman. Peristiwa  tersebut  menyebabkan  terhambatnya pertumbuhan  eksplan,  bahkan  akhirnya  dapat berimbas kepada kematian eksplan.
Kemungkinan lain yang dapat mempengaruhi  keberhasilan  pertumbuhan  eksplan yaitu  ukuran  eksplan.  Ukuran  eksplan  juga  dapat menjadi  faktor  penentu  pertumbuhan  eksplan dalam  kultur  in  vitro.    Abbas  (2011)  mengatakan bahwa  ukuran  eksplan  yang  kecil  kemungkinan besar  lebih  sulit  untuk  berkembang  dibandingkan eksplan  yang  mempunyai  ukuran  lebih  besar.  Hal ini  didukung  oleh  pernyataan  Zulkarnain  (2011) yang  mengungkapkan  semakin  kecil  ukuran eksplan  yang  dikultur  maka  semakin  kecil  pula kesempatan eksplan untuk berkembang.

## Waktu kemunculan akar
Hasil  analisis  ragam  waktu  kemunculan  akar menunjukkan  auksin  berpengaruh  nyata  terhadap waktu  kemunculan  akar.  Sedangkan,  konsentrasi auksin dan interaksi antara jenis dengan konsentrasi  auksin  tidak  berpengaruh  nyata
A B C
terhadap  waktu  kemunculan  akar.  Data  rataan waktu kemunculan akar (Gambar 2) menunjukkan perlakuan  dengan  IAA  9  µM  (A1K3)  dan    IBA  0 µM (A2K0) menghasilkan waktu kemunculan akar tercepat yaitu 12 hari setelah tanam.  Eksplan pada IBA 9 µM (A2K3) membentuk akar paling lambat
yaitu  pada  hari  ke-23.  Data  tersebut  juga menunjukkan  bahwa  rentang  waktu  pembentukan akar pada perlakuan IAA tidak jauh berbeda antar konsentrasi yang diberikan.
Rataan waktu kemunculan akar (Tabel 1) pada IAA menghasilkan  pembentukan  akar  talas  satoimo paling cepat (13,417 hari), meskipun tidak berbeda nyata  dengan  perlakuan  IBA  dan  NAA.  Hal  ini sesuai  dengan  Bhuiyan et  al .  (2011)  menyatakan bahwa  IAA  menghasilkan  respon  yang  baik  dalam inisiasi  akar C.  esculenta (L.)  Schott  var. globulifera. Pada  konsentrasi  rendah  yaitu  0,5 mg/l,  inisiasi  akar  terjadi  pada  hari  ke-14  setelah masa  tanam.  Namun  menurut  pendapat  Karjadi  & Buchory  (2007),  saat  inisiasi  akar  tanaman membutuhkan perlakuan dengan konsentrasi auksin tinggi.
Tabel 1. Pengaruh pemberian jenis auksin berbeda terhadap waktu kemunculan akar
Jenis Auksin Waktu  Kemunculan  Akar (Hari) IAA 13,417 a IBA 16,333 a NAA 18,667 a
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama menunjukan tidak berbeda nyata pada tingkat kesalahan 5%

## Jumlah akar
Perbedaan auksin berpengaruh nyata terhadap jumlah  akar  talas  satoimo.  Konsentrasi  auksin  dan interaksi  tidak  pengaruh  nyata  terhadap  jumlah akar. Akar yang tumbuh dengan baik menunjukkan unsur  hara  dalam  media  diserap  dengan  mudah oleh  tanaman  (Kartini  &  Karyanti,  2017).  Media dasar  yang  digunakan  yaitu  Murrashige  &  Skoog (MS-1962).  Menurut  Nisa  &  Rodinah  (2005), media  MS  mempunyai  sifat universal dan mengandung  jumlah  hara  organik  yang  cukup untuk memenuhi kebutuhan tanaman dalam kultur. Rataan jumlah akar (Gambar  3) talas satoimo menunjukkan  bahwa  IAA  dan  IBA  menghasilkan jumlah  akar  lebih  banyak  dari  NAA.  Peningkatan jumlah akar paling tinggi adalah IAA  3 µM (A 1 K 1 ) dengan  perolehan  42  akar/eksplan  (Gambar  4A), sedangkan jumlah akar paling rendah adalah NAA. Pertumbuhan  jumlah  akar  pada  perlakuan  IBA (Gambar 4B) dan NAA (Gambar 4C). Fuchs (1986) mengatakan penambahan auksin dengan konsentrasi  tertentu  tidak  selalu  meningkatkan pertumbuhan  akar  tetapi  justru  dapat  menurunkan pertumbuhan  akar.  Penggunaan  jenis  auksin  yang tepat  dan  konsentrasi  yang  optimal  penting  untuk menginduksi  perakaran,  sehingga  memperoleh pertumbuhan akar yang baik.
0 5 10 15 20 25 A1K0 A1K1 A1K2 A1K3 A2K0 A2K1 A2K2 A2K3 A3K0 A3K1 A3K2 A3K3 14 14 14 12 12 14 16 23 19 21 16 19 IN IS IA S I AK A R ( HA R I) JENIS DAN KONSENTRASI AUKSIN
Gambar 2. Grafik waktu kemunculan akar ( C. esculenta (L.) Schott var. antiquorum ) (IAA 0 µM (A 1 K 0 ), IBA 0  µM  (A 2 K 0 ),  NAA  0  µM  (A 3 K 0 ),  IAA  3  µM  (A 1 K 1 ),  IBA  3  µM  (A 2 K 1 ),  NAA  3  µM  (A 3 K 1 ),  IAA  6  µM (A 1 K 2 ), IBA 6 µM (A 2 K 2 ), NAA 6 µM (A 3 K 2 ), IAA 9 µM (A 1 K 3 ), IBA 9 µM (A 2 K 3 ),NAA 9 µM (A 3 K 3 )
Gambar 3. Pengaruh jenis auksin terhadap jumlah akar
Gambar 4. Akar 7 minggu setelah tanam : (A) IAA (B) IBA (C) NAA
Jumlah akar tertinggi tampak pada perlakuan yang  diberi  IAA,  dengan  jumlah  rataan  20 akar/eksplan,  meskipun  tidak  berbeda  nyata dengan  perlakuan  IBA  yaitu  14  akar/eksplan (Tabel  2).    Pemberian  IAA  dan  IBA  lebih  baik daripada  NAA.    Rostiana  &  Seswita  (2007), menyatakan  konsentrasi  yang  diperlukan  untuk menginduksi terbentuknya akar bervariasi, tergantung  dari  jenis  tanaman,  jenis  eksplan  dan jenis  auksin  yang  digunakan.    Hartmann et  al . (1990),  menyebutkan  untuk  meningkatkan  jumlah akar  dapat  diberikan  kombinasi  IBA  dan  NAA. Neto et  al. (2009)  mengatakan  bahwa  kombinasi dan konsentrasi auksin yang tepat dapat meningkatkan  persentase  induksi  akar  secara in vitro .
Tabel 2. Pengaruh pemberian jenis auksin berbeda terhadap jumlah akar
Jenis auksin Jumlah akar NAA 5,25 a IBA 13,75 ab IAA 20,417 b
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama menunjukan tidak berbeda nyata pada tingkat kesalahan 5%

## Panjang akar
Panjang  akar  dan  jumlah  akar  dapat menentukan sistem perakaran yang baik, sehingga dapat  memberikan  tingkat  keberhasilan  hidup eksplan  saat  dipindahkan  dari  lingkup in  vitro ke in  vivo (Akbar et  al .,  2017).  Berdasarkan  hasil analisis  ragam diketahui  bahwa  faktor  mandiri jenis  auksin  dan  interaksi  antara  jenis  dengan konsentrasi  auksin  memberikan  pengaruh  yang nyata  terhadap  panjang  akar  talas  satoimo. Sementara  konsentrasi  auksin  tidak  berpengaruh nyata terhadap panjang akar.
Rataan  panjang  akar  (Gambar  5)  talas satoimo  menunjukkan  bahwa  perlakuan  IAA  dan IBA  menghasilkan  akar  yang  lebih  panjang dibandingkan  pada  perlakuan  NAA.  Nilai  rataan panjang akar tertinggi yaitu (4,92 cm) terlihat pada perlakuan  IBA  dengan  konsentrasi  0  µM  (A 2 K 0 ) (Gambar 6A) dan IAA 6 µM (A 1 K 2 ) (Gambar 6B) yang mencapai 4,27 cm. Perlakuan NAA (Gambar 6C)  mempunyai  nilai  terendah.  Menurut  Salih et al .  (2016)  IBA  mempunyai  kemampuan  yang tinggi  dalam  mendukung  pembentukan  akar, karena sifatnya yang stabil. Pernyataan Salih et al .
(2016)  didukung  oleh  Bartel et  al. (2001)  yang mengatakan  bahwa Indole  Butyric  Acid (IBA) merupakan  jenis  auksin  yang  lebih  efesien  dalam stimulasi perakaran dibandingkan dengan IAA.
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 A1K0 A1K1 A1K2 A1K3 A2K0 A2K1 A2K2 A2K3 A3K0 A3K1 A3K2 A3K3 13 42 14 13 21 15 15 3 6 5 4 6 JUM LA H A KA R JENIS DAN KONSENTRASI ZPT A B C
Gambar 5 . Grafik panjang akar
Gambar 6 . Panjang akar (A) IBA (B) IAA (A1K2) (C) NAA
Rataan  panjang  akar  (Tabel  3)  menunjukkan IAA  memberikan  respon  yang  paling  baik  dalam memacu  pemanjangan  akar,  dan  berbeda  nyata dengan pemberiaan NAA.
Tabel 3. Pengaruh pemberian jenis auksin berbeda terhadap panjang akar
Jenis auksin Panjang akar (cm) NAA IBA IAA 0,56583 a 3,31 b

## 3,3592 b
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama menunjukan tidak berbeda nyata pada tingkat kesalahan 5%.
Rataan  panjang  akar  akibat  interaksi  antara jenis dan konsentrasi auksin (Tabel 4) menunjukkan  panjang  akar  tertinggi  dari  IBA  0 µM  (A 2 K 0 )  dengan  rataan  panjang  akar  4,92  cm. Secara  umum  IAA  dan  IBA  pada  berbagai konsentrasi  berbeda  nyata  dengan  NAA.    Panjang akar pada kontrol yang cukup tinggi pertumbuhannya, mengindikasikan bahwa kandungan  auksin  endogen  dalam  tubuh  tanaman telah  tercukupi.  Menurut  George  &  Sherington (1984),  mengemukakan  pemberian  zat  pengatur tumbuh  baik  auksin  maupun  sitokinin  eksogen
dapat  meningkatkan  biosintesis  hormon  alami. Salisbury & Ros (1995), mengemukakan penggunaan  auksin  konsentrasi  tinggi  dapat menghambat  pemanjangan  akar,  diduga  karena adanya peningkatan produksi etilen.
Auksin merangsang pemanjangan sel dengan cara peregangan dinding sel (Farida & Muslihatin, 2017). Auksin akan memacu sel untuk meningkatkan  pompa  ion  H + dari  sitoplasma  ke dinding  sel,  sehingga  pH  dinding  sel  menurun. Turunnya  pH  dinding  sel  akan  mengaktifkan enzim  yang  memecah  ikatan  hidrogen  molekul fibril  selulosa  sebagai  penyusun  dinding  sel. Dinding  sel  menjadi  longgar  karena  volume  air yang  masuk  meningkat,  sehingga  sel  akan memanjang  dan  membesar.  Kemudian,  auksin memberi signal ke aparatus golgi untuk mensekresi  matriks  penyusun  dinding  sel  yang baru.
0 1 2 3 4 5 A1K0 A1K1 A1K2 A1K3 A2K0 A2K1 A2K2 A2K3 A3K0 A3K1 A3K2 A3K3 2,43 2,62 4,27 4,23 4,92 3,15 1,8 3,36 0,66 0,6 0,63 0,38 PA N JA N G A KA R ( CM ) JENIS DAN KONSENTRASI ZPT A B C
Tabel 4. Pengaruh pemberian jenis dan konsenterasi auksin berbeda terhadap panjang akar Perlakuan Panjang akar (cm) NAA 9µM (A 3 K 3 ) NAA 3µM (A 3 K 1 ) NAA 6µM (A 3 K 2 ) NAA 0µM (A 3 K 0 ) IBA 6µM (A 2 K 2 ) IAA 0µM (A 1 K 0 ) IAA 3µM (A 1 K 1 ) IBA 3µM (A 2 K 1 ) IBA 9µM (A 2 K 3 ) IAA 9µM (A 1 K 3 ) IAA 6µM (A 1 K 2 ) IBA 0µM (A 2 K 0 ) 0,3767 a 0,5967 a 0,63 a 0,66 a 1,8033 ab 2,4267 abc 2,62 abc 3,1533 bc 3,36 bc 4,1233 bc 4,2667 bc
4,9233 c
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama menunjukan  tidak  berbeda  nyata  pada  tingkat kesalahan 5%

## Jumlah tunas dan daun
Hasil analisis ragam jumlah tunas dan jumlah daun  menunjukkan  bahwa  pemberian  jenis  auksin yang  berbeda  berpengaruh  nyata  terhadap  jumlah tunas dan jumlah daun talas satoimo. Namun, hasil dari  faktor  konsentrasi  auksin  dan  interaksi  antara jenis dengan konsentrasi auksin tidak berpengaruh nyata  terhadap  jumlah  tunas  dan  jumlah  daun. Rataan  jumlah  tunas  (Gambar  7)  talas  satoimo yang  diperoleh  menunjukkan  bahwa  perlakuan IAA  3  µM  (A 1 K 1 )  menghasilkan  peningkatan jumlah  tunas  yang  tinggi  yaitu  7  tunas/eksplan, sementara  perlakuan  NAA  dengan  konsentrasi  6 µM  (A 3 K 2 )  dan  9  µM  (A 3 K 3 )  tidak  terdapat  tunas yang  terbentuk.  Data  pada  (Gambar  7)  juga menunjukkan bahwa perlakuan IAA menghasilkan jumlah  tunas  lebih  baik  jika  dibandingkan  dengan perlakuan IBA apalagi NAA
Gambar 7. Grafik jumlah tunas ( C. esculenta (L.) Schott var. antiquorum )
Data  rataan  jumlah  daun  setelah  8  MST  (Gambar 8)  menunjukkan  peningkatan  tertinggi  jumlah daun  terjadi  pada  perlakuan  IAA  3  µM  (A 1 K 1 ) yaitu 25,3 daun/eksplan. Peningkatan jumlah daun terendah  tampak  pada  perlakuan  NAA  6  µM
(A 3 K 2 ).  Hal  ini  menunjukkan  korelasi  antara jumlah tunas dan jumlah daun, dimana pertumbuhan  tunas  diikuti  dengan  pertumbuhan daun (Gambar 9).
Gambar 8. Pengaruh jenis dan konsentrasi auksin terhadap jumlah daun
0 1 2 3 4 5 6 7 A1K0 A1K1 A1K2 A1K3 A2K0 A2K1 A2K2 A2K3 A3K0 A3K1 A3K2 A3K3 4,7 7 5,7 2 1,3 1,7 1 1 1 0,3 0 0 JUM LA H TU N A S JENIS DAN KONSENTRASI ZPT 0 5 10 15 20 25 30 A1K0 A1K1 A1K2 A1K3 A2K0 A2K1 A2K2 A2K3 A3K0 A3K1 A3K2 A3K3 14,3 25,3 16,3 10 6,3 7,3 6 5 5,3 4,7 2,3 3,7 JUM LA H DA UN JENIS DAN KONSENTRASI ZPT
Jumlah  tunas  dan  jumlah  daun  tertinggi terlihat  pada  perlakuan  yang  diberi  IAA  dan berbeda  nyata  dengan  perlakuan  IBA  dan  NAA (Tabel 5).
Tabel 5. Pengaruh pemberian jenis auksin berbeda terhadap jumlah tunas dan jumlah daun
Jenis auksin Jumlah tunas Jumlah daun NAA IBA IAA 0,33 a 1,25 a
4,83 b 4 a
6,17 a 16,5 b
Keterangan:  angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama menunjukan  tidak  berbeda  nyata  pada tingkat kesalahan 5%
Pertumbuhan  tunas  dengan  pemberian  ZPT auksin saja nampaknya kurang efektif, lain halnya apabila  auksin  dikombinasikan  dengan  sitokinin. Hal  ini  dikarenakan  penggunaan  auksin  tanpa dikombinasikan dengan sitokinin hanya mendorong  pertumbuhan  akar.  Kombinasi  auksin dan sitokinin 2 : 3  dapat mendorong pertumbuhan tunas,  dimana  konsentrasi  auksin  yang  digunakan harus lebih rendah dari sitokinin (Gunawan, 1992). Selain itu, auksin juga dapat berpengaruh terhadap pertumbuhan  daun.  Salah  satu  fungsi  auksin  pada pertumbuhan daun yaitu membantu perkembangan jaringan meristem calon daun (Sylvia, 2009).
Gambar  9. Jumlah tunas dan jumlah daun IAA 3 µM (A 1 K 1 )
IAA efektif untuk menginduksi perakaran talas  satoimo,  dibandingkan  dengan  IBA  dan NAA.  IAA  terbukti  menghasilkan  rataan  waktu muncul  akar  tercepat,  jumlah  akar  terbanyak, pemanjangan  akar,  jumlah  tunas  dan  jumlah  daun talas  satoimo.  IAA  merupakan  jenis  auksin endogen yang berperan dalam perkembangan akar. Penambahan  IAA  eksogen  akan  meningkatkan interaksi  antara  IAA  endogen  dan  eksogen (Hutapea,  2018)  yang  berbanding  terbalik  dengan NAA.  Weaver  (1972)  mengatakan  bahwa  NAA mempunyai sifat lebih toksik dibandingkan dengan
IAA  dan  IBA.  Syahid  &  Kristina  (2014) mengatakan  bahwa  setiap  jaringan  tanaman memiliki respon yang berbeda terhadap pemberian auksin dan konsentrasi yang berbeda. Oleh karena itu,  pemberian  auksin  dan  konsentrasi  yang optimum  perlu  sekali  untuk  diperhatikan,  guna mendapatkan kualitas akar yang bagus.

## SIMPULAN
Pemberian auksin berpengaruh pada perakaran ( C. esculenta (L.) Schott var. antiquorum )  dalam  kultur in  vitro .  IAA  dengan konsentrasi  3  µM  memberikan  respon  terbaik dalam  induksi  perakaran  satoimo  ( C.  esculenta (L.) Schott var. antiquorum ) dalam kultur in vitro .

## DAFTAR REFERENSI
Abbas,  B.,  2011. Prinsip  Dasar  Kultur  Jaringan. Bandung: Alfabeta.
Akbar,  A.,  Faridah,  E.,  Indrioko,  S.  &  Herawan,
T.,  2017.  Induksi  Tunas,  Multiplikasi  dan Perakaran Gyrinops versteegii (Gilg.) Domke Secara In Vitro. Pemuliaan Tanaman Hutan, 11(1), pp. 155 - 168.
Bartel,  B.,  LeClere,  S.,  Magidin,  M.  &  Zolman,
K.,  2001.  Inputs  To  The  Active  Indole-3- Acetic  Acid  Pool:  De  Novo  Synthesis, Conjugate  Hydrolysis  And  Indole-3-Butyric Acid –Oxidation. J. Plant Growth Regul, 20, pp. 198–216.
Bhuiyan, K. R., Hossain, M. J., Rahman, M. S. & Sattar,  M.  A.,  2011.  Root  Inititation  in Mukhikachu (Colocasia esculenta) as Influenced by IAA and NAA. Bangladesh J. Agril. Res, 36(3), pp. 487-494.
Evans,  D.  A.,  Sharp,  W.  R.  &  Flick,  C.  E.,  1981.
Growth  and  Behavior  of  Cell  Cultures. Embrygenesis and Organogenesia, s.l.: Acad.
Press.
Farida  ,  F.  I.  &  Muslihatin,  W.,  2017.  Induksi
Perakaran  Teh  (Camellia  sinensis  L.)  Secara in  Vitro  pada  Klon  yang  Berbeda. Sains  dan
Seni ITS, 6(2), pp. 2337-3520.
Fuchs,  H., 1986. Root regeneration of rose plants as influenced by applied auxins. Netherlands: Agricultural University.
George,  E.  F.  &  Sherington,  P.  D.,  1984. Plant propagation  by  tissue  culture. Britain: Eastern Press.
Gunawan,  L.,  1992.  Teknik  Kultur  Jaringan Tanaman.  Dalam: Departemen  Pendidikan Tinggi. Bogor:  Universitas  Bioteknologi Institut Pertanian Bogor, pp. 165.
Hutami,  S.,  2008.  Masalah  Pencoklatan  pada Kultur Jaringan. Biogen, 4(2), pp. 83-88.
Hutami,  S.  &  Purnamaningsih,  R.,  2013. Shoot Multiplication  of  Taro  (Colocasia  esculenta
var.  Antiquorum)  Through  In  vitro  Culture. Malang,  University  State  Maulana  Malik Ibrahim.
Hutapea,  A.  J.,  2018. Potensi  Bakteri  Pelarut Fosfat,  Pengikat  Nitrogen  dan  Penghasil
Hormon  IAA  dari  Rhizosfer  Tumbuhan
Poaceae Pantai dalam Meningkatkan Pertumbuhan Padi (Oryza sativa L). Medan, Universitas Sumatera Utara .
Karjadi,  A.  K.  &  Buchory,  A.,  2007.  Pengaruh NAA  dan  BAP  terhadap  Pertumbuhan
Jaringan Meristem Bawang Putih pada Media B5. J. Hort., 17(3), pp. 217-223.
Kartini,  M.  &  Karyanti,  2017.  Pengaruh Thidiazuron  dan  Hidrolisat  Kasein  Terhadap Multliplikasi  Tunas  Satoimo  (Colocasia esculenta  (L.)  Schott  var  antiquorum)  secara In  vitro. Bioteknologi  &  Biosains  Indonesia, 4(2), pp. 70-77.
Ko, C.-Y., Kung, J.-P. & Donald, R. M., 2008. In vitro  micropropagation  of  white  dasheen (Colocassia  esculenta). Afr.  J.  Biotechnol., 7(1), pp. 041-043.
Laosa,  A.,  Darman,  S.  &  Alam,  M.  N.,  2016. Analisis  Produksi  dan  Pendapatan  Usahatani Talas  Jepang  di  Desa  Tinakung  Kecamatan
Tinakung Selatan Kabupaten Banggai Kepulauan. J.Agroland, 23(3), pp. 174-181.
Mokhamad,  I.,  2013.  Respon  Bawang  Merah (Allium  ascalonicum  L)  terhadap  Zat Pengatur Tumbuh dan Unsur Hara. Agroteknologi, 3(2), pp. 35-40.
Neto, V.L.B., Reis, F.L., Finger, R.S., Baros, C.R., Carvalho  &  Otoni,  W.C.,  2009.  Involvement of  ethylene  in  the  rooting  of  seedling  shoot cultures  of  Bexa  orellana  L.  In  Vitro. Dev Biol Plant, 45, pp. 693-700.
Nisa, C. & Rodinah, 2005. Kultur Jaringan dengan Beberapa  Kultivar  Buah  Pisang  (Musa paradisiaca L.) dengan Pemberian Campuran NAA dan Kinetin. Bioscientiae, 2(2), pp. 23- 36.
Rostiana, O. & Seswita, D., 2007. Pengaruh Indole Butyric  Acid  dan  Naphtaleine  Acetic  Acid terhadap  Induksi  Perakaran  Tunas  Piretrum
[Chrysanthemum
cinerariifolium (Trevir.)Vis.]  Klon  Prau  6  secara  In  vitro.
Bul. Litro., 98(1), pp. 39-48.
Salih, M., Shmarey, I. & Dabagh, F., 2016. Indole- 3-Butyric Acid and Naphthalene Acetic Acid impact  on  in  vitro  of  Mariana  and Nemaguard  rootstocks.. IOSR  Journal  of Agriculture and Veterinary Science, 9(7), pp.
50-53.
Salisbury,  F.  &  Ros,  C.,  1995. Perkembangan Tumbuhan  dan  Fisiologi  Jilid  III. Bandung: ITB Press.
Seameo,  2007.  Talas  Jepang  (Satoimo). Biotrop Services Laboratory , 9 Desember. http://sl.biotrop.org/index.php  (diakses  pada 9 Desember 2018).
Syahid,  S.  F.  &  Kristina,  N.  N.,  2014.  Pengaruh Auksin  IBA  dan  NAA  terhadap  Induksi Perakaran  Inggu  (Ruta  graveolens  L.)  secara In vitro. Jurnal Littri, 20(3), pp. 122-129.
Sylvia, I., 2009. Pengaruh IBA dan NAA terhadap stek  Aglonema  Var.  Donna  Carmen  dengan perendaman. Bogor,  Institute  Pertanian Bogor.
Weaver,  J.,  1972.  Plant  Growth  in  Agriculture.
Dalam: San Frasisco: University of California, pp. 594.
Zulkarnain,  2011. Kultur  Jaringan  Tanaman. Jakarta: Bumi Aksara.