Jurnal Pro-Life, Volume 8 Nomor 3, November 2021

## Identifikasi Bakteri Patogen Escherichia coli dan Salmonella spp. pada Rectal Swab Penjamah Makanan Rumah Sakit Di Yogyakarta
Nur Ahmad Rudin*, Naufal Ghozi Aditya Perdana, Ninda Nur Amalia Departemen Biologi Tropika, Fakultas Biologi, Universitas Gadjah Mada Jl. Teknika Selatan, Senolowo, Sinduadi, Mlati, Kabupaten Sleman,
Daerah Istimewa Yogyakarta 55281, Indonesia *Corresponding Author: nur.ahmad.rudin@mail.ugm.ac.id

## Article History
Received    :   25 October 2021 Approved   :   21 November 2021 Published   :   30 November 2021

## Keywords
Escherichia coli, Salmonella spp. , antisera test, biochemistry test, rectal swab.

## ABSTRACT
Microbial  disease  is  an  important  health  problem  in  Indonesia. Microbial  diseases  are  often  related  to  food  sanitation,  such  as diarrhea,  vomiting,  typhus, gastrointestinal  infections  that  caused  by high  levels  microbial  contamination  in  food  served  by  various  food providers. Pathogenic bacteria that often cause disease in humans are Salmonella spp. which  causes  typhus,  and  Escherichia  coli  which causes  gastrointestinal  infections,  diarrhea,  and  meningitis.  Analysis of pathogenic microbes is important to determine the types species of microbes that cause disease so the diseases that caused by pathogenic microbes  in  the  community  can  be  anticipated  and  handled appropriately.  This  study  aims  to  determine  the  presence  of pathogenic  bacteria  E.  coli  and  Salmonella spp. on  food  handler rectal  swab  of  hospital  in  Yogyakarta.  The  research  was  carried  out by identification of bacteria with biochemical tests using BBL Crystal and  pathogenicity  test  with  E.  coli  antisera  test.  The  results  showed that pathogenic E. coli found in food handlers rectal swab of RS2004 and  RS2005,  and  nonpathogenic  E.  coli  found  in  RS2001,  RS2002, dan  RS2003.  Salmonella spp. is  not  found  in  food  handlers  rectal swab of hospital in Yogyakarta.

## PENDAHULUAN
Mikroorganisme patogen
menyebabkan penyakit pada organisme lain. Untuk dapat menyebabkan penyakit, mikroorganisme patogen harus  dapat  masuk  ke  tubuh  inang. Penyakit timbul akibat infeksi menghasilkan perubahan pada fisiologi
normal  tubuh  (Harti, 2015). Pada manusia,  salah  satu  jenis  bakteri  yang seringkali  menjadi  agen  penyebab penyakit  adalah Salmonella spp.  yang menyebabkan penyakit tifus, dan Escherichia  coli yang  menyebabkan penyakit  infeksi saluran  pencernaan, diare, dan meningitis (Todar, 2008).

## Prolife

## Jurnal Pendidikan Biologi, Biologi, dan Ilmu Serumpun
https://ejournal.uki.ac.id/index.php/prolife
© 2022 Universitas Kristen Indonesia Under the license CC BY-SA 4.0
Penyakit  akibat  mikroorganisme merupakan  masalah  kesehatan  penting di  Indonesia  serta  masih  memerlukan perhatian yang khusus.  Penyakit akibat mikroorganisme  sering  berhubungan dengan  bidang  penyehatan  makanan, seperti  penyakit  diare,  muntaber,  tifus, infeksi saluran pencernaan, dan sebagainya. Masalah di bidang penyehatan  makanan  adalah  masih tingginya tingkat kontaminasi mikroorganisme  pada  makanan  yang disajikan  oleh  berbagai  penyelenggara makanan,  antara  lain  pedagang  kaki lima,  restoran,  jasa  boga,  rumah  sakit, dan  industri  makanan.  Kontaminasi dapat  berasal  dari  hewan  produksi (peternakan)  atau  penjamah  makanan. Kontaminasi juga terjadi melalui makanan yang diproduksi berhubungan langsung  dengan  permukaan  meja  atau alat  pengolah  makanan  selama  proses persiapan yang sebelumnya telah terkontaminasi mikroorganisme patogen (Yuliani & Oematan, 2013).
Keterlibatan manusia dalam proses  pengolahan  makanan  sangat besar,  sehingga  penerapan  sanitasi  di dalamnya  perlu  mendapat  perhatian khusus  karena  manusia  berpotensi menjadi  salah  satu  mata  rantai  dari penyebaran  penyakit,  terutama  yang disebabkan oleh mikroorganisme
melalui  makanan.  Penjamah  makanan harus  sehat  jasmani  rohani,  tidak menderita  penyakit  menular,  atau berperan sebagai carier (Purnawijayanti, 2012).
Penularan bibit penyakit pada diri sendiri atau orang lain dapat dipengaruhi oleh penularan dari tangan ke  mulut  penderita  sendiri  karena menggaruk daerah perianal atau karena memegang  benda-benda  lain  yang terkontaminasi.  Higiene  perorangan mencakup  semua  segi  kebersihan  dari pribadi  penjamah  makanan  tersebut. Menjaga  higiene  perorangan  berarti menjaga  hidup  bersih  dan  menjaga kebersihan  seluruh  anggota  tubuh. Syarat utama pengelola makanan adalah  memiliki  kesehatan  yang  baik. Salah  satu  metode  dalam  pemeriksaan kesehatan  penjamah  makanan  adalah pemeriksaan rectal swab yaitu pemeriksaan  dengan  melakukan  apus pada sekitar anus dan perianal (Saragih et  al. ,  2014). E.  coli dan Salmonella spp.  merupakan  jenis  bakteri  patogen yang  sering  ditemukan  pada  saluran pencernaan  dan  menjadi  penyebab penyakit akibat mikroorganisme. Analisis mikroorganisme patogen bersifat penting untuk mengetahui jenis mikroorganisme  penyebab  penyakit sehingga penyakit akibat
mikroorganisme patogen di masyarakat dapat diantisipasi dan ditangani dengan tepat.  Penelitian  ini  dilakukan  untuk mengidentifikasi  bakteri  patogen E. coli dan Salmonella spp.  pada rectal swab penjamah  makanan  rumah  sakit di Yogyakarta.

## METODE PENELITIAN
Penelitian dilakukan selama 8 hari pada 20 – 27 Juli 2018 di Laboratorium Mikrobiologi Klinis, Balai Besar Teknik
Kesehatan
Lingkungan dan Pengendalian  Penyakit  (BBTKLPP), Yogyakarta.
Bahan dan Alat Penelitian
Bahan  yang  digunakan  adalah sampel rectal  swab 5  orang  penjamah makanan  rumah  sakit  di  Yogyakarta dengan kode sampel (RS2001, RS2002, RS2003, RS2004, dan RS2005), media transport  amis  ( Carry  n  Blair ),  ringer,
Selenite  broth ,  BHI  ( Brain  Heart Infussion ),  Cr  ( Chromocult ),  EMB ( Eosin Methylene Blue ), SS
( Salmonella  Shigella ),  XLD  ( Xylose Lysine Deoxycholate ),
MC
( MacConkey ), ID Broth, medium E/NF, dan antiserum H7.
Alat  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  lidi  kapas  steril, lampu Bunsen, tabung reaksi, inkubator,  cawan  petri,  ose,  BSC ( Biological  Safety  Cabinet ),  jarum
inokulum, BBL Crystal, vortex, nephelometer,  gelas  benda,  pipet  tetes, dan lup.

## Pengambilan Sampel
Responden  berada  pada  posisi menungging,  kedua  tangan  responden dipersilahkan memegang masing– masing  pinggul  dan  melakukan  posisi telungkup,  kemudian  anus  dilebarkan dengan  tangan  kiri.  Lidi  kapas  yang dibasahi  dengan  ringer  secara  aseptik disiapkan  dan  dimasukkan  ke  dalam anus  sedalam  2  –  3  cm.  Lidi  kapas diputar  searah  jarum  jam.  Lidi  kapas ditarik  dan  dimasukkan  ke Carry  n Blair sampai tenggelam. Sampel disimpan  di  dalam ice  box dan  segera dikirim ke laboratorium.
Inokulasi  Sampel  pada  Medium Pengkaya
Sampel rectal swab diinokulasikan  ke  medium  pengkaya BHI  dan Selenite  broth dengan  cara dituang  dari Carry  n  Blair secara aseptik. Sampel diinkubasi  24 jam pada 35 °C.
Inokulasi  Sampel  pada  Medium Selektif
Sampel rectal  swab dari  medium pengkaya  diinokulasikan  ke  medium selektif  dengan streak  plate .  Sampel dari Selenite  broth diinokulasikan  ke medium SS dan XLD, sementara sampel
dari BHI diinokulasikan ke medium  Cr, EMB,  dan  MC.  Sampel  diinkubasi  24 jam pada 35 °C.
Inokulasi  Bakteri  Tersangka  pada BHI
Koloni  bakteri  tersangka E.  coli pada  medium  selektif  Cr,  EMB,  MC, dan Salmonella spp.  pada  medium selektif SS, XLD diinokulasikan ke BHI dengan  cara  diambil  menggunakan  ose untuk  koloni  berukuran  besar  dan digunakan jarum inokulum untuk koloni berukuran  kecil  secara  aseptik  pada BSC. Sampel diinkubasi 24 jam pada 35 °C.
Uji Penegasan pada Medium Selektif
Isolat bakteri pada BHI diinokulasikan  ke  medium  selektif dengan streak  plate .  Isolat  yang  diduga
E.  coli diinokulasikan  pada  MC.  Isolat yang diduga Salmonella spp. diinokulasikan  pada  XLD.  Sampel diinkubasi 24 jam pada 35 °C.

## Uji Biokimia
Koloni  bakteri  tersangka rectal swab pada  medium  selektif  diambil menggunakan  ose  secara  aseptik  dan dimasukkan  ke  ID  Broth,  lalu  di  vortex hingga  homogen.  Sampel  di  dalam  ID Broth diukur tingkat kekeruhan
menggunakan  nephelometer  (kekeruhan berkisar 0,5 – 0,8). Setelah
mendapatkan  tingkat  kekeruhan  yang
sesuai,  sampel  dituangkan  ke  BBL Crystal,  lalu  ditambahkan  medium E/NF.  BBL  Crystal  diinkubasi  selama 24  jam  pada  35  °C.  Jenis  bakteri diidentifikasi dengan komputer menggunakan  aplikasi BBL  Crystal Microbiology Interactive Database . Hasil identifikasi yang diperoleh dicetak.

## Tes Antisera Escherichia coli
Permukaan gelas benda digambari lingkaran.  Antiserum  H7  diteteskan  di dalam  area  lingkaran  pada  gelas  benda. Koloni  bakteri E.  coli diambil  dengan ose dan diratakan dengan antiserum H7. Gelas  benda  diputar  agar  koloni  bakteri dan  antiserum  H7  tercampur  hingga homogen.  Hasil  positif  ditandai  dengan adanya gumpalan seperti pasir.

## Analisis Data
Analisis  data  dilakukan  secara kualitatif dengan membaca jenis bakteri hasil  pengujian  biokimia  dan  melihat terbentuknya  gumpalan  seperti  pasir pada tes antisera E. coli .

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Inokulasi  sampel  ke  medium selektif menunjukkan pertumbuhan bakteri E.  coli pada  medium  Cr ( Gambar
1a ) menghasilkan
pertumbuhan  koloni  positif  pada  semua sampel rectal swab responden.
Pertumbuhan  koloni  positif  tersebut ditunjukkan  dengan  koloni  berwarna biru.  Koloni  bakteri  berwarna  biru terbentuk karena interaksi antara substrat X–glucuronide oleh s–D– glucoronidase dan Salmon–GAL oleh s– D–galactosidase yang  menghasilkan kombinasi enzim (Finney et al ., 2003).
Pada EMB ( Gambar 1b )
pertumbuhan koloni negatif pada semua sampel rectal  swab responden.  Hal  ini disebabkan E.  coli belum  mencapai tahap  akhir  fermentasi  laktosa  sehingga belum terbentuk koloni berwarna metalik  pada  medium.  Pada  MC ( Gambar  1c )  pertumbuhan  koloni positif  pada  sampel rectal  swab isolat
RS2003, RS2004, dan RS2005,
sementara  pertumbuhan  koloni  negatif pada  RS2001  dan  RS2002.  Terjadinya perbedaan  pertumbuhan  koloni  antara sampel rectal swab tersebut  disebabkan bakteri E. coli ada yang sudah mencapai tahap  akhir  fermentasi  laktosa  sehingga menghasilkan karakteristik koloni berwarna  ungu  dan  berkabut,  namun terdapat juga bakteri E. coli yang belum menyelesaikan fermentasi laktosa sehingga  menghasilkan  pertumbuhan koloni negatif pada medium MC.
Pertumbuhan  bakteri Salmonella spp.  sampel rectal  swab pada  medium
SS ( Gambar 2a ) menunjukkan
pertumbuhan  koloni  positif  pada  semua sampel, kecuali sampel RS2003. Pertumbuhan  koloni  positif  ditunjukkan dengan  karakteristik  koloni  berupa  titik hitam  dan  dikelilingi  zona  disekitarnya. Terbentuknya  koloni  terjadi  karena Salmonella spp. telah mengalami metabolisme dan menghasilkan hidrogen sulfida sehingga sodium tiosulfat  dan  ferrat  sitrat  mampu mendeteksi  bakteri  yang  menghasilkan hidrogen  sulfida  dengan  karakteristik koloni  berupa  titik  hitam  (Chouhan, 2015),  sementara  pada  sampel rectal swab RS2003 tidak terjadi pertumbuhan koloni  disebabkan  kemungkinan  tidak ditemukan Salmonella spp. di dalamnya sehingga  tidak  dihasilkan  hidrogen sulfida,  dan  tidak  terbentuk  koloni berupa titik hitam. Pada XLD ( Gambar 2b )  pertumbuhan  koloni  positif  terjadi pada  sampel rectal  swab RS2005, sementara  sampel  lainnya  tidak  terjadi pertumbuhan koloni. Pertumbuhan koloni positif ditandai dengan karakteristik  koloni  berwarna  hitam. Pertumbuhan  koloni  terjadi  karena adanya  metabolisme Salmonella spp. menggunakan  sodium  tiosulfat  dari XLD  menghasilkan  hidrogen  sulfida yang menyebabkan terbentuknya koloni berwarna  hitam.  Pada  sampel  lainnya tidak  terbentuk  koloni  disebabkan
Salmonella spp.  tidak  menggunakan sodium tiosulfat secara signifikan untuk metabolisme  sehingga  tidak  terbentuk koloni berwarna hitam, dan pada sampel RS2003  tidak  mengandung Salmonella
spp. karena kultur pada medium SS juga tidak menunjukkan pertumbuhan koloni. (a.) (b.)
(c.)
Gambar 1 . Pertumbuhan koloni E. coli pada; a.) Cr; b.) EMB; dan c.) MC
(a.) (b.)
Gambar 2 . Pertumbuhan koloni Salmonella spp. pada; a.) SS; dan b.) XLD
Hasil pertumbuhan koloni bakteri E.  coli dan Salmonella spp. yang  positif  pada  medium  selektif, dilakukan  inokulasi  pada  BHI  dan dilanjutkan pada medium MC ( Gambar  3 ),  sehingga  diperoleh hasil  pertumbuhan  koloni E.  coli positif  pada  medium  selektif  asal  Cr adalah  sampel rectal  swab RS2001 (ulangan 1,2) dan RS2002,
sementara tidak terjadi pertumbuhan
koloni  pada  sampel rectal  swab RS2003, RS2004, dan RS2005. Hasil pertumbuhan koloni positif ditunjukkan dengan karakteristik koloni  berwarna  ungu  dan  berkabut. Pertumbuhan  koloni E.  coli positif pada  medium  selektif  asal  MC adalah  semua  sampel rectal  swab menunjukkan  pertumbuhan  koloni positif, yaitu  pada RS2003, RS2004, dan RS2005.
(a) (b.)
Gambar  3 .  Pertumbuhan  koloni  bakteri  tersangka  pada  MC;  a.) E.  coli; dan b.) Salmonella spp.
Terjadinya  perbedaan  pertumbuhan koloni  antara  sampel rectal  swab tersebut disebabkan karena bakteri E. coli ada yang sudah  mencapai  tahap  akhir  fermentasi laktosa sehingga
menghasilkan
karakteristik  koloni  berwarna  ungu  dan berkabut,  namun  terdapat  juga  bakteri E. coli yang belum menyelesaikan fermentasi laktosa sehingga menghasilkan
pertumbuhan  koloni  negatif  pada  medium MC.  Pertumbuhan  koloni Salmonella spp. pada  medium  selektif  asal  SS  dan  BHI memiliki pertumbuhan koloni negatif pada semua  sampel rectal  swab .  Hal  ini menunjukkan  koloni  positif  terhadap Salmonella spp. pada pengujian sebelumnya  bukan  merupakan Salmonella spp.  Hal  ini  disebabkan  pertumbuhan
koloni  bakteri  pada  SS  dan  XLD  dengan karakteristik berwarna hitam karena bakteri Salmonella spp. melakukan aktivitas metabolisme sehingga menghasilkan  hidrogen  sulfida.  Namun, selain Salmonella spp.  terdapat  golongan bakteri lain yang juga mampu menghasilkan  H 2 S,  yaitu  cyanobacteria, bakteri  anaerobik,  bakteri Enterobacter cloacae atau Clostridium spp.  (Barton et al. , 2014).
Uji  biokimia  pada  penelitian  ini dilakukan  dengan  BBL  Crystal.  BBL Crystal  merupakan  salah  satu  perangkat yang  digunakan  untuk  mengidentifikasi pada uji biokimia. BBL crystal merupakan metode  identifikasi  yang  lebih  praktis karena  merupakan  modifikasi  dari  metode konvensional menggunakan gula-gula, substrat fluorogenic , dan substrat chromogenic .  BBL  Crystal  terdiri  dari  30 panel  yang  merupakan  substrat  biokimia dan  enzimatik.  Suspensi  bakteri  pada inokulum  cair  digunakan  untuk  rehidrasi substrat  tersebut.  Pengujian  dilakukan melalui sistem database berdasarkan penggunaan  substrat  oleh  mikroorganisme dan  degradasi  substrat  spesifik  sehingga dapat terdeteksi oleh indikator.
Enzim hidrolitik pada substrat fluorogenic mengandung derivate coumarin berupa 4-methylumbelliferone (4MU) atau 7-amino-4-methylcoumarin (7- AMC),  dengan  hasil  pada  peningkatan
fluorescence sehingga mudah divisualisasikan  menggunakan  sinar  UV. Substrat chromogenic mengalami hidrolisis dan  menghasilkan  produk  sehingga  terjadi perubahan  warna  yang  dapat  dideteksi menggunakan  mata  telanjang  (Soler et  al. , 2003).  Hasil  tersebut  dicocokkan  dengan database  pada  aplikasi BBL  Crystal Microbiology Interactive Database sehingga jenis bakteri dapat teridentifikasi.
ID  Broth  merupakan  larutan  yang berfungsi  melarutkan  koloni  bakteri  pada medium  untuk  membuat  inokulum  cair dengan tingkat kekeruhan tertentu sehingga  suspensi  isolat  bakteri  dapat diidentifikasi oleh substrat pada panel BBL Crystal  maupun  panel  NID  atau  PID  pada BD  Phoenix™.  Medium  E/NF  merupakan bagian  dari  perangkat  BBL  Crystal  yaitu sistem  multitest  untuk  mengidentifikasi bakteri gram negatif aerobik yang termasuk ke dalam famili Enterobacteriaceae.  Prinsip medium E/NF pada  BBL  Crystal  adalah  memisahkan oxidase  dan  indole.  Setelah  18  sampai  20 jam inkubasi, panel siap dibaca menggunakan  aplikasi  (Leboffe  &  Pierce, 2011).
Berdasarkan  pertumbuhan  koloni bakteri  positif  pada  MC,  dilakukan  uji biokimia    dan  didapatkan  hasil  semua sampel rectal swab mengandung bakteri E. coli . E. coli adalah salah satu jenis spesies utama bakteri gram negatif. Pada
umumnya,  bakteri  ini  dapat  ditemukan dalam usus besar manusia. Kebanyakan E. Coli tidak  berbahaya,  tetapi E.  Coli tipe O157  dan  H7  dapat  mengakibatkan keracunan  makanan  yang  serius  pada manusia  yaitu  diare  berdarah  karena eksotoksin  yang  dihasilkan  (verotoksin). Toksin ini bekerja dengan cara menghilangkan  satu  basa  adenin  dari  unit 28S rRNA, sehingga menghentikan sintesis protein  (Levinson,  2008).  Oleh  karena  itu, perlu dilakukan tes antisera untuk mengetahui  patogenitas E.  coli pada sampel rectal swab .
Berdasarkan  hasil  uji  biokimia, dilakukan  tes  antisera  untuk  mengetahui patogenitas E. coli sampel rectal swab . Tes antisera  dilakukan  dengan  permukaan gelas  benda  digambari  lingkaran.  Hal  ini berfungsi untuk membatasi larutan sehingga  tidak  keluar  dari  batas  lingkaran. Antiserum  H7  diteteskan  di  dalam  area lingkaran pada gelas benda. Koloni bakteri E.  coli diambil  dengan  ose  dan  diratakan dengan antiserum H7. Gelas benda diputar agar  koloni  bakteri  dan  antiserum  H7 tercampur  hingga  homogen.  Hasil  positif ditandai  dengan  adanya  gumpalan  seperti pasir.  Berdasarkan  tes  antisera  tersebut diperoleh hasil E. coli patogen pada sampel rectal swab RS2004 dan RS2005, sementara E.  coli non-patogen  pada RS2001,  RS2002,  dan  RS2003.  Dari  hasil tersebut  RS2004  dan  RS2005  sebagai
penjamah  makanan  rumah  sakit  perlu mendapatkan  pengobatan  untuk  mencegah penyebaran E.  coli patogen  pada  pasien rumah sakit.
Escherichia coli O157:H7
merupakan  jenis E.  coli yang  patogen terhadap manusia dan banyak menyebarkan  penyakit  pada  manusia (Perna et al. , 2001). Dalam metabolismenya E.  coli O157:H7  dapat menggunakan rafinosa dan dulcitol. Selain itu, E. coli 0157:H7 juga memiliki ciri-ciri kondisi  lingkungan  yang  berbeda  dengan E. coli lainnya, yaitu dapat bertahan hidup pada  kondisi  suhu  yang  rendah  dan  dalam kondisi asam (Madigan, 2009).
Penyakit yang biasa ditimbulkan oleh E.  coli O157:H7  pada  manusia  adalah hemorrhagic colitis (HC), hemolytic uremic  syndrome (HUS),  dan thrombotic thrombocytopenic  purpura . Haemorrhagic colitis memiliki  gejala  diare  berdarah, kram perut, gagal ginjal, dan menyebabkan kematian  mikroflora  dalam  usus.  Apabila haemorrhagic  colitis dibiarkan,  penyakit ini  dapat  berakibat  fatal  karena  adanya komplikasi yang disebabkan oleh haemolytic  uraemic  syndrome dan  dapat menyebabkan  kerusakan  sel  darah  merah, gagal  ginjal,  serta  diare  dengan  feses mengeluarkan darah. Thrombotic
thrombocytopenic purpura dapat
menyebabkan thrombocytopenia , anemia ,
demam, kerusakan pencernaan, dan kerusakan saraf (Perna et al. , 2001).
E.  coli patogen  memiliki  adhesin yang  dikenal  dengan  intimin  untuk pelekatan pada sel epitelial yang disandikan  oleh  gen  eae. E.  coli O157:H7 ini  juga  memiliki  antigen  flagella  yaitu  H yang  memiliki  struktur  yang  panjang. Antigen  H  ini  memiliki  spesifitas  serologi yang  ditentukan  dari  epitopnya. E.  coli
O157:H7  ini  juga  mempunyai  antigen somatik  yaitu  antigen  O  (Ratiner et  al. , 2003).  Hal  tersebut  menyebabkan  test antisera  untuk  mengetahui  patogenitas E. coli digunakan antiserum H7 dan antiserum O157.
Penelitian  ini  digunakan  antiserum H7  karena  persediaan  di  laboratorium. E. coli O157:H7 memiliki toksin yang disebut dengan shiga  (vero) toxin .  Toksin  yang dihasilkan E.  coli galur  ini  adalah  toksin yang  mirip  dengan Shigella  dysenteriae . Shiga-like  toxin E.  coli (STEC)  adalah patogen  yang  berada  dalam  pencernaan dan manusia yang terserang serotipe STEC ini, disebut juga dengan terserang enterohemorrhagic E. coli (EHEC). Faktor virulensinya adalah shiga toxin 1 dan shiga toxin  2 .  Toksin  shiga  yang  mirip  dengan Shigella spp. adalah shiga toxin 1 (Geue et al. , 2006).

## SIMPULAN
Bakteri Escherichia  coli patogen teridentifikasi  pada  sampel rectal  swab penjamah  makanan  RS2004  dan  RS2005, sementara Salmonella spp. tidak teridentifikasi  pada  sampel rectal  swab penjamah makanan rumah sakit di Yogyakarta.

## DAFTAR PUSTAKA
Barton  LL,  M  Fardeau,  &  GD  Fauque. 2014.  “Chapter  10.  Hydrogen Sulfide:  A  Toxic  Gas  Produced  by Dissimilatory  Sulfate  and  Sulfur
Reduction and Consumed by Microbial Oxidation". Dalam Kroneck  MH,  Peter,  S  Torres,  &  E Martha. The Metal-Driven Biogeochemistry of Gaseous
Compounds  in  the  Environment.
Metal  Ions  in  Life  Sciences ,  14:  237 – 277.
Chouhan S. 2015. Recovery of Salmonella and Shigella isolates  from  drinking water. European Journal of Experimental Biology , 5(7): 49 – 61. Finney M, J Smullen, HA Foster, S Brokx,
&  DM  Storey.  2003.  Evaluation    of Chromocult  coliform  agar  for  the detection and enumeration of Enterobacteriaceae from faecal samples from healthy subjects.
Journal of Microbiological Methods ,
54: 353 – 358.
Geue  L,  T  Selhorst,  C  Schnick,  B  Mintel,
& FJ Conraths. 2006. Analysis of the clonal  relationship  of  Shiga  Toxin- Producing Escherichia coli serogroup  O165:H25  isolated  from cattle. Appl  Environ  Microbiol , 72(3): 2254 – 2259.
Harti  AS.  2015. Mikrobiologi  Kesehatan  : Peran  Mikrobiologi  Dalam  Bidang Kesehatan .    CV.  Andi  Offset. Yogyakarta. pp. 15 – 21.
Leboffe  MJ  &  BE  Pierce.  2011. A photographic
atlas for the microbiology  laboratory .  4th  ed. Morton Publishing Company. Colorado. pp. 14,17,66. Levinson  W.  2008. Review  of  Medical Microbiology . The McGraw-Hill Companies. New York.
Madigan  MT.  2009. Brock  Biology  of Microorganisms .  12th  ed.  Pearson Benjammin Cummings. San Francisco. pp. 171 – 179. Perna  NT,  G  Plunkett  3rd, V  Burland, B
Mau, JD Glasner, DJ Rose, GF
Mayhew, PS  Evans, J  Gregor, HA
Kirkpatrick, G  Pósfai, J  Hackett, S Klink, A Boutin, Y Shao, L Miller, E
J  Grotbeck, NW  Davis, A  Lim, ET
Dimalanta, KD Potamousis, J Apodaca, TS Anantharaman, J Lin, G Yen, DC Schwartz, RA Welch, FR  Blattner.  2001.  Genome sequence of enterohaemorrhagic Escherichia  coli O157:H7. Nature ,
409: 529 – 531.
Purnawijayanti.  2012. Sanitasi  Higiene dan  Keselamatan  Kerja  Dalam Pengolahan Makanan . Penerbit
Kanisius. Yogyakarta.
Ratiner  YA, S  Salmenlinna, M Eklund,  M Keskimaki,  &  A  Siitonen.  2003. Serology and genetics of the flagellar antigen of Escherichia coli O157:H7. J  Clin  Microbiol ,  41(3):  1033  – 1040.
Saragih  BG,  Devi,  &  Nurmaini.  2014.
Sanitasi  Makanan  Minuman  dan Pemeriksaan Rectal  swab Penjamah Makanan  pada  Hotel  Arya  Duta Medan  Dan  Hotel  The  Palace  Inn Tahun 2013. Jurnal  Lingkungan dan Kesehatan Kerja , 3(3): 1 – 12.
Soler  L,  F  Marco,  J  Vila,  MR  Chaco,  J Guarro,  &  MJ  Figueras.  2003. Evaluation  of  Two  Miniaturized Systems,  MicroScan  W/A  and  BBL Crystal  E/NF,  for  Identification  of Clinical  Isolates  of Aeromonas spp. Journal  Of  Clinical  Microbiology ,
41(12): 5732 – 5734.
Todar  K.  2008. Online  Textbook  of Bacteriology .
http://www.textbookofbacteriology.n et/index.html.  Diakses  pada  2  April 2020, jam 09.00.
Yuliani  NS  &  AB  Oematan.  2013.
Identifikasi mikrobiologi ( Staphylococcus dan  Coliform)  pada susu  dan  daging  serta  olahannya  di Kota Jogjakarta. Partner , 20(1): 20-2