JIPK

## JURNAL ILMIAH PERIKANAN DAN KELAUTAN

## Research Article
Studi Pertumbuhan Populasi Spirulina sp . pada Skala Kultur yang Berbeda
Study of Spirulina sp . Population Growth in The Different Culture Scale
Nanik Retno Buwono 1 *, dan Raden Qonitah Nurhasanah 2
1 Dosen Program Studi Manajemen Sumberdaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Brawijaya
2 Mahasiswa Program Studi Manajemen Sumberdaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Brawijaya

## ARTICLE INFO
Received: February 05, 2018 Accepted: April 27, 2018
*) Corresponding author:
E-mail: buwonoretno@ub.ac.id
Kata Kunci : Spirulina sp ., Teknik  kultur, Pertumbuhan, Kualitas air
Keywords : Spirulina sp.,  Culture  techniques, Growth, Water quality
Abstrak
Salah satu mikroalga yang berpotensi untuk dikembangkan dan banyak terdapat di perairan Indonesia adalah Spirulina sp . Kultur Spirulina sp. sebagai  upaya  peningkatan  produksi  dapat  dilakukan  dalam  skala laboratorium dan skala semi massal. Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui  pertumbuhan  populasi Spirulina sp  dan  perbandingan kualitas  media  air  kultur  pada  skala  kultur  yang  berbeda  yaitu  skala laboratorium dan  skala  semi  massal.  Metode  yang  digunakan  dalam penelitian ini adalah metode eksperimen dengan parameter yang diukur yaitu  kepadatan  sel  dari  mikroalga  dan  parameter  kualitas  air  meliputi suhu,  pH,  oksigen  terlarut,  nitrat  dan  orthofosfat.  Hasil  penelitian menunjukkan bahwa pertumbuhan kultur pakan alami Spirulina sp . skala laboratorium  berlangsung  selama  15  hari  sedangkan  pada  skala  semi massal  adalah  15-30  hari.  Kepadatan  awal  sel Spirulina sp . skala laboratorium yaitu 15.229 unit/ml dan skala semi massal 28.417 unit/ml. Puncak  kepadatan  populasi  sel Spirulina sp . skala  laboratorium  terjadi pada hari ke-8 yaitu 181.963 unit/ml, sedangkan untuk skala semi massal masih terus mengalami peningkatan jumlah kepadatan sel pada hari ke- 15  sebanyak  295.317  unit/ml.  Hasil  kualitas  air  yang  diperoleh  pada kultur Spirulina sp. skala laboratorium maupun skala semi massal masih menunjang pertumbuhan mikroalga Spirulina sp. secara optimal.

## Abstract
One of the potential microalgae that have the potential to be developed and widely available in Indonesian waters is Spirulina sp . Spirulina sp. culture as an effort to increase production can be done in laboratory scale and semi- mass scale. The purpose of this research was to determine the population growth  of Spirulina sp.  and  comparison  the  water  of  media  culture  at different culture scale i.e laboratory scale and semi-mass scale. The method used in this research is experimental method with parameters  measured i.e cell  density  of  microalgae  and  also  water  quality  parameters  include temperature, pH, dissolved oxygen, nitrate and orthophosphate. The results showed that the growth of Spirulina sp. culture on the laboratory scale lasts for  15  days  while  on  the  semi-mass  scale  is  15-30  days.  The  initial  cell ensity of Spirulina sp. on the laboratory scale is 15.229 units/ml and on the semi-mass  scale  is  28.417  units/ml.  The  peak  cell  population  density Spirulina sp. on the laboratory scale occurred on the 8th day of 181.963 units/ml, while for the semi-mass scale still continues to increase the
Copyright ©2018 Universitas Airlangga                                                                                                 April  2018          26
number of cell density on the 15th day of 295,317 units / ml. The quality of water obtained at Spirulina sp. laboratory scale culture and semi-mass scale still support the growth of Spirulina sp. microalgae optimally.
Cite this as: Nanik, R. B., & Raden Q. N., (2018). Studi Pertumbuhan Populasi Spirulina sp. pada Skala Kultur yang Berbeda . Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan, 10(1):26–33. http://doi.org/10.20473/jipk.v10i1.5842

## 1. Pendahuluan
Spirulina sp . merupakan  mikroalga  yang menyebar secara luas di alam dan dapat ditemukan di berbagai tipe lingkungan, baik di perairan payau, laut dan tawar (Ciferri, 1983). Mikroalga Spirulina sp . merupakan organisme autotroph berwarna hijau kebiruan  terdiri  dari  sel-sel  silindris  yang membentuk  koloni  dimana  selnya  berkolom membentuk  filament  terpilin  menyerupai  spiral (helix)  sehingga  disebut  juga  alga  biru  hijau berfilamen  (Ariyati,  1998;  Hariyati,  2008). Spirulina sp . merupakan jenis mikroalga golongan Cyanophyta atau alga hijau biru ( blue-green algae ) yang telah banyak digunakan sebagai pakan alami dalam usaha budidaya khususnya dalam pembenihan  karena  memiliki  nilai  nutrisi  yang tinggi. Kandungan protein Spirulina sp adalah 60- 70%  sedangkan  kandungan  lemak  cukup  rendah yaitu 1,5-12% (Chrismada et al ., 2006; Utomo et al .,  2005).  Seperti  yang  telah  dijelaskan  oleh Cahyaningsih  dan  Subyakto  (2009),  mikroalga merupakan  komponen  penting  dalam  akuakultur, karena  mikroalga  sebagai  produsen  primer berfungsi  sebagai  awal  aliran  energi dalam  rantai makanan di perairan.
Spirulina banyak digunakan sebagai pakan tambahan  ikan  hias  karena  dapat  menambah pewarnaan  akibat  pigmen  yang  terkandung didalamnya.  Pigmen  tersebut  antara  lain  klorofil (0,08%), beta karoten (0,23%) dan xanthofil (0,12- 0,15%).  Selain  sebagai  pakan  alami Spirulina sp . banyak  digunakan  sebagai  imunostimulan,  obat- obatan, kosmetik dan pewarna alami (Utomo et al .,
2005).  Kegunaan Spirulina sp.  yang  beragam menjadikan  mikroalga  ini  berpotensi  untuk dikembangkan.  Kegiatan  kultur  alga  merupakan salah  satu  upaya  pengembangan  dan  pemenuhan kebutuhan  dari Spirulina sp.  sehingga  pasokan Spirulina sp.  tidak  hanya  bergantung  pada  alam Menurut Herawati dan Hutabarat (2014), salah satu tujuan  kultur  alga  adalah  untuk  mendapatkan kelimpahan  sel  yang  tertinggi  dengan  kandungan nutrisi optimal.
Menurut  Sukardi et  al .,  (2014),  kultur mikroalga dapat dilakukan dalam skala laboratorium  dan  skala  massal.  Bibit  fitoplankton dikultur skala laboratorium terlebih dahulu hingga
mencapai volume 15 L. Selanjutnya, dikembangkan  kultur  skala  semi  massal  (80-100 L),  kultur  dilakukan  di  luar  ruangan  atau semi- outdoor .  Kultur  plankton  semi  massal  dilakukan untuk meningkatkan biomassa Spirulina sp . yang telah dikultur pada skala laboratorium sebelumnya, sehingga diharapkan mendapat kelimpahan Spirulina sp . yang lebih besar dibandingkan kultur Spirulina sp . pada skala laboratorium.
Pertumbuhan populasi Spirulina sp. pada kegiatan kultur dapat diketahui dari pertambahan jumlah sel atau kepadatan sel dan juga ukuran sel Spirulina sp. yang bertambah besar. Berdasarkan kepadatan sel Spirulina sp. maka akan terlihat pola pertumbuhan alga  hingga  mencapai  puncak  populasi sehingga dapat ditentukan saat yang tepat proses pemanenan dari kultur tersebut. Studi kasus ini dilakukan untuk mengetahui  pertumbuhan  populasi Spirulina sp. dan  perbandingan  kualitas  air  media  kultur  pada skala kultur yang berbeda yaitu skala laboratorium dan semi massal

## 2. Materi dan Metode

## 2.1 Materi Penelitian
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah  inokulan Spirulina sp.,  akuades,  air  laut, pupuk  Walne,  pupuk  (KCL,  NPK,  ZA  dan  urea), vitamin B12, garam krosok, alkohol, tisu, klorin, Na –thiosulfat  serta  larutan  test  kit  untuk  nitrat  dan orthofosfat.

## 2.2 Metode Penelitian
2.2.1 Persiapan dan sterilisasi wadah kultur
Wadah  kultur  untuk  kegiatan  kultur  skala laboratorium  disterilisasi  secara  kimia  dengan menggunakan klorin dengan dosis 1 ml dalam 1 L air,  sehingga  dibutuhkan  klorin  sebanyak  10  ml dilarutkan dalam air 10 L kemudian ditunggu selama 24  jam.  Selang  aerasi  dan  batu  aerasi  yang  akan digunakan dimasukkan pula ke dalam toples berisi larutan  klorin  untuk  proses  sterilisasi.  Selanjutnya toples  diisi  kembali  dengan  air  laut  sebanyak  8  L untuk  proses  sterilisasi  air  laut  dengan  klorin. Sebelum digunakan untuk kultur mikroalga, terlebih dahulu larutan klorin dinetralkan dengan larutan Na- thiosulfat dengan dosis 1 ml dalam 1 L air.
Terlebih  dahulu  Na-thiosufat  sebanyak  5  gram dilarutkan dalam 1 L air, kemudian diambil 8 ml dan dimasukkan  ke  dalam  toples  berisi  air  laut  8  L. Langkah selanjutnya menunggu selama 24 jam dan dilanjutkan  dengan  tes  kandungan  klorin  air  laut dalam toples siap digunakan untuk kultur mikroalga. Wadah  kultur  skala  semi  massal  adalah  bak  fiber berukuran  120  cm  x  60  cm  x  12  cm.  Bak  fiber dibersihkan menggunakan detergen, disikat hingga bersih dan dibilas dengan  air. Air yang digunakan untuk  media  kultur  sebanyak  volume  ±100  L dimasukkan  ke  dalam  bak  fiber  setelah  disaring terlebih dahulu dengan filter bag . Selang aerasi dan batu  aerasi  juga  dimasukkan  ke  dalam  bak  fiber. Langkah selanjutnya, menambahkan garam krosok dengan  dosis  30  gram  dalam  1  L  air,  sehingga diperlukan  ±  3.000  gram  garam  krosok  untuk mendapatkan  air  bersalinitas  antara  20  -  30  ppt. Langkah  selanjutnya,  proses  sterilisasi  wadah  dan media  air  dengan  larutan  klorin  dosis  1  ml/L sehingga dibutuhkan 100 ml dan ditungguhingga 24 jam. Setelah 24 jam, media air tersebut dinetralkan dengan Na-thiosulfat 0,01 N yang telah dilarutkan dengan  dosis  1  ml/L  sehingga  dibutuhkan  100  ml dan ditunggu selama 24 jam.

## 2.2.2 Persiapan pupuk
Kegiatan kultur Spirulina sp . skala laboratorium  menggunakan  pupuk  Walne  dengan dosis  1  ml/L  dan  ditambah  vitamin  B12  dengan dosis  1ml/L.  Pada  skala  semi  massal,  pupuk  yang digunakan  adalah:  KCL  0,2  gram/liter,  NPK 0,1gram/liter , Urea 0,1 gram/liter, ZA 0,8 gram/liter, dan kapur dolomit 0,01 gram/liter.

## 2.2.3 Persiapan inokulan
Langkah  awal persiapan inokulan Spirulina sp.  kultur  skala  laboratorium  adalah  menyiapkan toples  berukuran  3  liter  yang  diisi  dengan  air sebanyak  2  liter  dan  ditambahkan  pupuk  Walne sebanyak  2  ml  (dosis  1  ml/L)  dan  vitamin  B12 sebanyak  2  ml  (dosis  1  ml/L).  Bibit  inokulan ditambahkan sebanyak 200 - 400 ml (10 - 20% dari volume air) dan diaerasi terus menerus dan ditunggu selama 5 hari sehingga Spirulina sp . siap digunakan stok inokulan skala laboratorium. Stok Spirulina sp . tersebut dikemas dalam botol steril ukuran 500 ml ditutup  rapat  dengan  alumunium  foil  dan dimasukkan ke dalam kulkas
Langkah  awal  kultur  skala  semi  massal ukuran bak fiber, adalah menyiapkan stok inokulan terlebih  dahulu  dalam  toples  bervolume  10  liter.
Toples yang sudah disterilisasi diisi air laut sekitar 8 L  air  dan  diberi  8  ml  Na-thiosulfat  untuk menetralkan klorin. Selanjutnya ditambahkan pupuk Walne  sebanyak  8  ml  (dosis  1  ml/L)  dan  vitamin B12  sebanyak  8  ml  (dosis1  ml/L)  untuk  setiap toples. Bibit inokulan yang digunakan sebanyak 800 - 1.600 ml (10-20% dari volume air) pada masing- masing toples dan diaerasi secara terus-menerus dan ditunggu  selama  7  hari.  Setelah  itu  siap  dijadikan stok  inokulan  untuk  kegiatan  kultur  skala  semi massal dengan bak fiber.
2.3.4 Kultur Spirulina sp .
Kultur Spirulina sp . skala  laboratorium menggunakan toples yang diisi air sebanyak 8 liter dan  ditambahkan  Na-thiosulfat  sebanyak  8  ml, pupuk Walne dan vitamin B12 dengan dosis 1ml/L. Setelah  toples  siap,  inokulan  500  ml  yang  telah disiapkan  dimasukkan  ke  dalam  toples.  Dalam kultur Spirulina sp . skala laboratorium, suhu diatur 24°C  dan  jarak  antar  toples  dengan  lampu  neon sekitar 30 cm. Jumlah lampu neon yang digunakan sebanyak dua buah lampu, masing-masing dengan daya 32 Watt dengan lama penyinaran 24 jam per hari.
Aerasi  dilakukan  terus  menerus  dan pengamatan  pertumbuhan Spirulina sp . setiap  hari selama  15  hari.  Kultur Spirulina sp . skala  semi massal dengan menggunakan bak fiber yang diisi air sebanyak ±100 liter selanjutnya ditambahkan garam krosok dengan dosis 30 gram dalam 1 L air untuk mendapatkan  air  bersalinitas  antara  20  -  30  ppt. Proses sterilisasi wadah dan media air kultur skala semi  massal  menggunakan  klorin  100  ml  dan dinetralkan  menggunakan  Na-thiosulfat  0,01  N sebanyak  100  ml.  Selanjutnya  pemberian  pupuk pada  air  dalam  bak  fiber.  Pupuk  yang  digunakan antara  lain,  yaitu  KCL  sebanyak  20  gram,  NPK sebanyak  10  gram,  ZA  sebanyak  80  gram,  kapur sebanyak 1 gram dan urea sebanyak 10 gram. Tahap terakhir  yaitu  pemberian  inokulan Spirulina sp . sebanyak ±10 liter dengan pemberian aerasi secara terus menerus dan dilakukan pengamatan pertumbuhan Spirulina sp . selama 15 hari.

## 3. Hasil dan Pembahasan
3.1 Pertumbuhan Populasi Spirulina sp .
Pertumbuhan populasi dihitung dengan cara menghitung jumlah unit Spirulina sp., dimana unit Spirulina sp . yaitu  satu  panjang  gelombang  terdiri dari satu lembah satu gunung (Sari, 2009).
Copyright ©2018 Universitas Airlangga                                                                                                 April  2018          28
Perhitungan  kepadatan Spirulina sp . menurut Pramushinta et al ., (2012) adalah sebagai berikut : = 1000/3,14 (/2)2 , dimana N = Kepadatan Spirulina sp . (unit/ml); d = Diameter bidang pandang (mm); n = Jumlah rata-rata Spirulina sp . per bidang pandang (unit/ml).  Pengamatan  pertumbuhan Spirulina sp . dilakukan setelah 24 jam penebaran awal setiap hari. Pengamatan pertumbuhan Spirulina
sp. menggunakan  mikroskop  binokuler  dengan  dua
perbesaran  yaitu  400  dan  1000  kali.  Hasil pengamatan Spirulina sp . dengan mikroskop dapat dilihat pada Gambar 1 berikut.
Pengukuran  kepadatan  sel  pada  kultur Spirulina sp . dilakukan setiap hari pada pukul 09.00
WIB  selama  15  hari  pemeliharaan.  Data  yang diperoleh dari hasil pengukuran kepadatan sel dapat dilihat pada Gambar 2.
Gambar 1. Kepadatan Spirulina sp.: (a) Perbesaran lensa objective 4x (b) Perbesaran lensa objective 10x
Gambar 2. Pola Pertumbuhan Populasi Spirulina sp pada Skala Laboratorium dan Semi Massal
Dari  grafik  tersebut  diketahui  bahwa  populasi tertinggi  (puncak)  kultur Spirulina sp . skala laboratorium  terjadi  pada  hari  ke  8  yaitu  sebesar 181.963  unit/ml.  Fase  adaptasi  terjadi  pada  hari pertama  dan  ke-dua,  kemudian  fase  eksponensial dimana  tejadi  peningkatan  jumlah  kepadatan Spirulina sp . pada hari ke-tiga hingga hari ke-tujuh.
Fase  stationer  yaitu  fase  saat  jumlah  populasi Spirulina sp . cenderung  tetap terjadi pada hari ke- delapan hingga ke-11. Selanjutnya pada hari ke-12 hingga hari ke-15 terjadi fase deklinasi (kematian). Penurunan populasi Spirulina sp. yang tejadi pada kultur  skala  laboratorium  dimungkinkan  karena kandungan  nutrien  yang  sudah  semakin  sedikit dalam media air kultur.   Menurut Rusyani (2001), terjadinya  penurunan  populasi  mikroalga  atau jumlah  sel  disebabkan  kandungan  nutrien  dalam media kultur terbatas. Pada awal kultur, kandungan nutrien  pada  media  masih  tinggi  sehingga  dapat dimanfaatkan  oleh  fitoplankton  untuk  melakukan proses  pertumbuhan.  Setelah  terjadi  peningkatan jumlah sel hingga pada satu titik puncak populasi, pertumbuhan  sel  akan  terhenti.  Pada  titik  tersebut
kebutuhan nutrien menjadi semakin menurun karena tidak  dilakukan  penambahan  nutrien  yang  berasal dari  pupuk.  Pertumbuhan Spirulina sp . selain dipengaruhi  oleh  ketersediaan  nutrien  juga dipengaruhi  oleh  faktor  lingkungan  (Astiani et  al .,
2016).
Pertumbuhan  populasi Spirulina sp . skala semi  massal  menunjukkan  jumlah  kepadatan Spirulina sp . semakin  hari  semakin  meningkat, bahkan belum terlihat terjadi penurunan hingga hari ke-15. Fase adaptasi terjadi pada hari pertama dan ke-dua. Pada fase eksponensial terjadi pening katan jumlah  kepadatan Spirulina sp . pada  hari  ke-tiga hingga  hari  ke-15.  Dari  grafik  pola  pertumbuhan populasi Spirulina sp. pada skala laboratorium dan semi  massal  terjadi  perbedaan  pola  pertumbuhan dimana pada kultur skala laboratorium pertumbuhan mencapai  puncaknya  pada  hari  ke-delapan, sedangkan  pada  kultur  skala  semi  massal pertumbuhan  sampai  hari  ke-15  belum  terlihat puncaknya.
Tabel 1 . Nilai Kualitas Air Spirulina sp pada Kultur Skala yang Berbeda
Kualitas Air Kisaran Hasil pengukuran Kisaran Optimal Skala Skala Semi Laboratorium Massal Suhu (°C) 22-24 26-28 20 - 30 (Hariyati, 2008) Salinitas (ppt) 36-39 22-26 0 - 35 (Isnansetyo dan Kurniastuty, 1995) 30 - 60 (Richmond, 1986) pH 8 8 7 - 11 (Ciferri, 1983) DO (ppm) 7,9-8,9 8,9-9,7 3 -10 (Kordi dan Tanjung, 2007) Nitrat (ppm) awal kultur : 13,1 awal kultur : 11 10 (PP RI No. 82 Tahun2001) akhir kultur : 0,5 akhir kultur : 1 0,9 - 3,5 (Widianingsih, 2008) Orthofosfat awal kultur : 5,5 awal kultur : 4,9         0,05-0,20 (Subarijanti, 2000) (ppm) akhir kultur : 2 akhir kultur : 2
Hal  ini  diduga  kandungan  nutrien  dalam  kultur Spirulina sp . skala  semi  massal  masih  mencukupi untuk  kebutuhan  pertumbuhan Spirulina sp. sehingga  pertumbuhannya  masih  terus  meningkat. Hu (2004) menyatakan, bahwa ada perbedaan fase pertumbuhan  mikroalga  membuktikan  terdapat faktor  yang  mempengaruhi  fotosintesis  akan mempengaruhi pertumbuhan sel Spirulina sp..
Menurut  Widyartini  (2007),  pemanenan mikroalga  yang  tepat  dapat  dilakukan  berdasarkan pola  pertumbuhan  mikroalga  dan  harus  pada  saat mencapai  puncak  populasi.  Pemanenan  yang terlampau  cepat  atau  belum  mencapai  puncak populasi,  maka  sisa  zat  hara  masih  cukup  besar sehingga dapat membahayakan organisme pemangsa atau organisme yang akan mengkonsumsi mikroalaga tersebut. Apabila pemanenan terlambat maka  sudah  banyak  terjadi  kematian  mikroalga sehingga  kualitasnya  menurun.  Waktu  pemanenan yang tepat  untuk  skala  semi  massal  yaitu  berkisar pada  hari  ke-15  sampai  dengan  hari  ke-30. Pemanenan  dapat  dilakukan  secara  total  atau sebagian.  Pemanenan  sebagian  dilakukan  dengan mengambil  2/3  bagian  dan  1/3  bagian  yang  lain diberi air laut diikuti dengan pemupukan kembali.
Pemberian  dosis  pupuk  harus  disesuaikan dengan skala kultur Spirulina sp . Kandungan pupuk yang  terlalu  sedikit  ataupun  berlebih  akan menghambat  pertumbuhan Spirulina sp . Menurut Hastuti  dan  Handajani  (2001),  pemberian  nutrien pada  media  dalam jumlah  berlebih  maka  akan bersifat racun yang dapat menghambat pertumbuhan.  Subarijanti  (2005)  menambahkan semakin tinggi dosis pemberian pupuk pada media kultur  mikroalga  maka  tingkat  kekeruhan  juga semakin tinggi, dimungkinkan fosfat dalam  media tidak termanfaatkan. Tingkat kekeruhan yang tinggi dapat menyebabkan rendahnya penetrasi cahaya dan menyebabkan  terganggunya  proses  fotoautotrofik dari mikroalga.
3.2  Kualitas  Air  pada  Media  Pertumbuhan Spirulina sp .
Faktor penting yang mempengaruhi pertumbuhan  fitoplankton  selama  kultur  adalah kualitas  air  yaitu  kondisi  fisika  dan  kimia  dari medianya.  Kondisi  fisika  meliputi  suhu,  intensitas cahaya dan aerasi. Sementara kondisi kimia meliputi salinitas, pH, kadar oksigen terlarut, nitrat dan fosfat (Yusuf et al ., 2012).
Parameter kualitas air yang diukur sebagai faktor pendukung  selama  pelaksanaan penelitian antara  lain  suhu,  salinitas,  pH,  DO  nitrat,  dan fosfat.  Kisaran  hasil  pengukuran  kualitas  air selama kegiatan kultur dan batas optimum bagi
pertumbuhan Spirulina sp . dapat  dilihat  pada Tabel 1.
Hasil pengukuran suhu pada skala laboratorium berkisar antara 22 – 24°C, sedangkan pada skala semi massal berkisar antara 26 – 28 °C. Menurut Hariati (2008), Spirulina sp . dapat tumbuh maksimal pada suhu antara 20 – 30 °C. Kisaran suhu selama  pemeliharaan  kultur Spirulina sp . masih dalam keadaan optimal disebabkan kultur dilakukan pada ruangan dengan suhu terkontrol
Nilai  suhu  yang  didapatkan  pada  kultur Spirulina sp . skala laboratorium cenderung konstan pada  23°C  karena  dipengaruh  oleh  suhu  ruangan yang menggunakan pendingin ruangan. Namun nilai suhu  pada  kultur Spirulina sp . skala  semi  massal mempunyai nilai suhu yang relatif lebih tinggi sebab lokasi kultur terkena sinar matahari secara langsung. Morris  dan  Kromkamp  (2003)  menyatakan  laju pertumbuhan mikroalga menurun pada konsentrasi sel  maksimum  disebabkan  oleh  kenaikan  suhu  di atas 30 °C.  Nilai  salinitas pada  skala  laboratorium berkisar  antara  36  -  39  ppt,  sedangkan  pada  skala semi massal berkisar sebesar 22 - 26 ppt. Perbedaan salinitas ini disebabkan perbedaan sumber air yang digunakan.
Kultur skala laboratorium menggunakan air laut sebagai media tumbuh sehingga diperoleh nilai salinitas  yang  lebih  tinggi  dibandingkan  dengan skala  semi  massal  yang  menggunakan  air  sumur atau  air  tawar  dengan  diberi  penambahan  garam krosok sehingga didapatkan salinitas berkisar antara 20 – 30 ppt. Perbedaan sumber air yang digunakan untuk  media  tumbuh Spirulina sp . karena terbatasnya stok air laut yang tersedia. Nilai salinitas pada kultur Spirulina sp . masih dalam batas toleransi untuk  media  tumbuh Spirulina sp . Menurut Isnansetyo  dan  Kurniastuty  (1995),  kandungan salinitas untuk pertumbuhan Spirulina sp. berkisar antara  0  –  35  ppt.  Selain  itu Spirulina  sp. dapat tumbuh dalam media air bersalinitas tinggi. Hal ini sesuai  dengan  pernyataan  Richmond  (1986), salinitas pada Spirulina sp . berkisar antara 30 – 60 ppt.
Nilai pH air pada skala laboratorium maupun skala  semi  massal  pada  hari  pertama  hingga  hari terakhir pengukuran atau hari kelima belas memiliki nilai  yang  konstan  yaitu  sebesar  8.  Nilai  pH  hasil pengukuran  pada  kultur Spirulina sp . termasuk optimal untuk pertumbuhan Spirulina sp . Menurut Isnansetyo  dan  Kurniastuty  (1995),  pH  yang  baik untuk pertumbuhan Spirulina sp . berkisar antara 7,2
– 9,5. Akan tetapi, ada beberapa spesies yang masih dapat bertahan hingga pH 11. Hal ini sesuai dengan pernyataan menurut Ciferri (1983), menyatakan
bahwa pH yang baik untuk pertumbuhan Spirulina sp . berkisar antara 7 – 11..
Hasil pengukuran oksigen terlarut (DO) yang terkandung  dalam  kultur Spirulina sp . pada  skala semi massal lebih tinggi yaitu berkisar antara 8.9 – 9.7 mg/L dibandingkan dengan nilai DO pada skala laboratorium yaitu berkisar antara  7.9 – 8.9 mg/L. Hal  ini  dikarenakan  cahaya  yang  diterima  oleh kultur  mikroalga  pada  skala  semi  massal  untuk proses  fotosintesis  diperoleh  langsung  dari  sinar matahari  sedangkan  pada  kultur  mikroalga  pada skala  laboratorium  cahaya  diperoleh  dari  sinar lampu TL. Selain itu, diketahui adanya keterkaitan bahwa  suhu  yang  lebih  tinggi  tentu  memiliki kandungan oksigen terlarut yang lebih tinggi pula. Nilai  oksigen  terlarut  yang  diperoleh  termasuk optimal untuk pertumbuhan Spirulina sp . Menurut Kordi dan Tanjung (2010), minimal jumlah oksigen yang  dibutuhkan  untuk  respirasi  biota  budidaya adalah  3  ppm.  Kandungan  oksigen  di  dalam  air dianggap optimum untuk budidaya biota air adalah 4 – 10 ppm tergantung pada jenis dan ukurannya.
Spirulina sp . skala  laboratorium  berturur- turut yaitu sebesar 13.1 mg/L dan 0.5 mg/L, Nitrat
(NO3)  adalah  bentuk  utama  nitrogen  di  perairan alami  dan  merupakan  nutrien  utama  bagi pertumbuhan alga dan tanaman. Grobbelar (2004), menyebutkan  bahwa  nitrogen  adalah  unsur  yang sangat  penting  bagi  mikroalga.  Hasil  pengamatan kadar  kadar  nitrat  pada  awal  dan  akhir  kultur Spirulina sp . skala semi massal adalah 11 mg/L dan 1 mg/L. Kandungan nitrat yang terdapat pada kultur Spirulina sp . pada awal pengukuran mencapai nilai yang optimum bagi pertumbuhan Spirulina sp . Hal ini  sesuai  dengan  pernyataan  PP  RI  No.  82  tahun 2001  tentang  Pengelolaan  Kualitas  Air  dan Pengendalian Pencemaran, yang menyatakan bahwa kandungan  nitrat  optimum  yaitu  sebesar  10  ppm untuk  memenuhi  kebutuhan  nutrien  selama pertumbuhan Spirulina sp .
Hasil  pengamatan  kadar  orthofosfat  pada awal  dan  akhir  kultur Spirulina sp . skala laboratorium  berturur-turut  yaitu  sebesar  >5  mg/L dan 2 mg/L, sedangkan kadar orthofosfat pada awal dan  akhir  kultur Spirulina sp . skala  semi  massal adalah 4.9 mg/L dan 2 mg/L. Menurut Subarijanti (2000),  umumnya  kadar  fosfat  di  dalam  perairan dalam jumlah kecil yaitu 0,05 - 0,20 mg/L dan fosfat mempunyai  mobilitas  yang  sangat  kecil.  Kadar fosfat  yang  tinggi  dalam  perairan  alami  dapat memicu pertumbuhan tanaman air dan alga secara berlebihan. Selain itu menurut Arizuna et al ., (2014), kandungan fosfat dalam air merupakan karakteristik kesuburan  perairan.  Dalam  kegiatan  penelitian  ini terkait dengan kultur pakan alami, fosfat yang tinggi
baik  untuk  menunjang  pertumbuhan Spirulina sp . sehingga  didapatkan  kepadatan Spirulina sp . yang tinggi.
Kandungan nitrat dan orthofosfat pada akhir pengukuran  kultur Spirulina sp . terlihat  berkurang dibandingkan kandungan nitrat dan orthofosfat pada awal  pengukuran.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa unsur nitrat dan orthofosfat digunakan oleh Spirulina
sp . untuk mencukupi kebutuhan nutrien sel.

## 4. Kesimpulan
Berdasarkan  hasil  penelitian  diperoleh pertumbuhan Spirulina sp . skala  laboratorium berlangsung selama 15 hari dan skala semi massal adalah 15 – 30 hari. Puncak kepadatan sel Spirulina sp . skala  laboratorium  terjadi  pada  hari  ke-8  yaitu 181.963  unit/ml.  Pada  skala  semi massal  belum terlihat  puncak  kepadatan  tertinggi,  karena  hingga akhir pengamatan atau hari ke-15 kepadatan masih terus  meningkat.  Pertumbuhan Spirulina sp . ditunjang oleh nutrien dan kualitas air sebagai media hidup harus sesuai dengan batas toleransi Spirulina sp .. Faktor nutrien dan kualitas air berada pada batas optimal  untuk  pertumbuhan Spirulina sp . pada kultur skala laboratorium dan semi massal.

## Daftar Pustaka
Ariyati, S. (1998). Pengaruh Salinitas & Dosis Pupuk
Urea terhadap Pertumbuhan Populasi Spirulina sp . Skripsi. Jurusan Biologi. Fakultas Matematikan  &  Ilmu  Pengetahuan  Alam. Semarang: Universitas Diponegoro.
Arizuna, M., Suprapto, D., & Muskananfola, M. R.
(2012). Kandungan Nitrat & Fosfat dalam Air Pori  Sedemen  di  Sungai  &  Muara  Sungai Wedung  Demak. Diponegoro  Journal  of Maquares , 3 (1) : 7 -16
Astiania,  F.,  Dewiyanti,  I.,  &  Mellisa,  S.  (2016). Pengaruh  Media  Kultur  yang  Berbeda terhadap  Laju  Pertumbuhan  &  Biomassa Spirulina  sp. Jurnal  Ilmiah  Mahasiswa Kelautan & Perikanan Unsyiah , 1 (3) : 441- 447
Cahyaningsih,  S.,  &  Subyakto,  S.  (2009).  Kultur Massal  Scenedesmus  sp.  sebagai  Upaya Penyedia Pakan Rotifera dalam Bentuk Alami Maupun Konsentrat. Jurnal Ilmiah Perikanan
& Kelautan . 1 (2) : 143-147.
Chrismada,  T.,  Lily,  P.,    &  Yayah,  M.  (2006).
Pengaruh  Konsentrasi  Nitrogen  &  Fosfor terhadap  Pertumbuhan,  Kandungan  Protein, Karbohidrat  &  Fikosianin  pada  Kultur Spirulina fusiformis. Berita Biologi , 8 (3):163- 169.
Ciferri, O. (1983). Spirulina, The Edible Microorganism.  Microbiological  Reviews. Vol. 47, No. 4 p. 551-578. American Society for Microbiology
Grobbelaar,  J.  U.  (2004).  Algal  Nutrition  :  Mineral Nutrition.  Handbook  of  Microalgal  Culture,
Biotechnology  And  Applied  Phycology. Iowa,  USA:  Blackwell  Publ  Ltd.  hlm.  97  – 115.
Hariyati,  R.  (2008).  Pertumbuhan  &  Biomassa Spirulina sp . dalam  Skala  Laboratoris. Laboratorium  Ekologi  &  Biosistematik. BIOMA , 10 (1) : 19-22.
Hastuti,  D.  S.,  &  Handajani,  H.  (2001).  Budidaya Pakan Alami. Fakultas Peternakan-Perikanan. Malang: UMM.
Herawati,  V.  E,  &  Hutabarat,  J.  (2014).  Pengaruh pertumbuhan,  lemak  &  profil  asam  amino essensial  Skeletonema  cotatum  dalam  kultur massa menggunakan media kultur teknis yang berbeda. Jurnal Aquasains . 2(3): 221- 226.
Hu,  Q.  (2004).  Environmental  Effect  on  Cell Composition.  Di  dalam  Richmond,  A.E. (editor).  Handbook  of  Microalgal  Culture, Biotechtology and Applied Phycology. Iowa, USA: Blackwell Publ Ltd. hlm: 84
Isnansetyo, A., & Kurniastuty. (1995). Teknik Kultur
Phytoplankton & Zooplankton. Pakan Alami untuk Pembenihan Organisme Laut. Yogyakarta: Kanisius.
Kordi,  M.  G.  H.,  &  Tanjung,  A.  B.  (2007). Pengelolaan  Kualitas  Air  dalam  Budidaya Perairan. Jakarta : Rineka Cipta
Morris, E. P., & Kromkamp, J. C. (2003). Influence of Temperature on the Relationship Between Oxygenand Fluorescence-based Estimates of Photosynthetic  Parameters  in  a  Marine Benthic  Diatom  (Cylindrotheca  closterum).
European Journal of Phycology, 38 : 133-142.
Peraturan Pemerintah RI No. 82 Tahun 2001 tentang Pengelolaan  Kualitas  Air  &  Pengendalian Pencemaran.
Pramushinta, G., Masithah, E. D., & Rahardja, B. D. (2012).  Pengaruh  Pemberian  Pupuk  Cair Limbah  Ikan  Lemuru  terhadap  Kandungan
Karotenoid  Spirulina  platensis. Journal  of Marine and Coastal Science , 1 (2) : 91 -100.
Richmond, A. (1986). Cell Response to Enviromental Factors. In : Richmond, A. (Ed.), Handbook of Microalgae Mass Culture. Boca Raton: CRC Press. p : 69 – 99.
Rusyani,  E.  (2001).  Pengaruh  Dosis  Zeolit  yang Berbeda  terhadap  Pertumbuhan  Isochrysis galbana Klon Tahiti Skala Laboratorium dama Media  Komersial.  Skripsi.  Program  Studi Budidaya  Perairan.  Fakultas  Perikanan  & Ilmu  Kelautan.  Bogor:  Institut  Pertanian Bogor.
Sari,  L.  A.  (2009).  Pengaruh  Penambahan  FeCl3 Terhadap  Pertumbuhan  spirulina  platensis yang  Dikultur  pada  Media  Asal  Blotong Kering. Artikel Skripsi. Fakultas Perikanan & Ilmu  Kelautan.  Surabaya  :  Universitas Airlangga.
Subarjanti, H. U. (2000). Ekologi Perairan. Fakultas Perikanan. Malang: Universitas Brawijaya.
Subarijanti. (2005). Pemupukan dan  Kesuburan
Perairan. Fakultas Perikanan. Malang: Universitas Brawijaya.
Sukardi, P., Winanto, T., Hartoyo, Pramono, T. B., & Wibowo,  E.  S.  (2014).  Mikroenkapsulasi Protein  Sel  Tunggal  dari  Berbagai  Jenis Mikroalga. Jurnal  Akuakultur  Indonesia ,  13 (2) : 115-119.
Utomo,  N.  B.  P.,  Winarti,  &  Erlina.  (2005). Pertumbuhan Spirulina platensis yang dikultur dengan Pupuk Inorganik (Urea, TSP & ZA) & Kotoran Ayam. Jurnal Akuakultur Indonesia ,
4 (1) : 41-48
Widyartini,  D.  S.  (2007).  Pertumbuhan  Mikroalga Spirulina  Hasil  Kultur  skala  Semi  Massal. Fakultas  Perikanan  &  Ilmu  Kelautan. Purwokerto: Universitas Soedirman.
Yusuf, M., Handoyo, G., Muslim, & Wulandari, S. S. Y.  (2012).  Karakteristik  Pola  Arus  Dalam Kaitannya  dengan  Kondisi  Kualitas  Perairan &  Kelimpahan  Fitoplankton  di  Perairan Kawasan  Taman  Nasional  Karimun  Jawa.
Buletin Oceanografi Mirna , 1(5) : 63-74