## STANDARISASI EKSTRAK AIR DAUN JATI BELANDA DAN TEH HIJAU
Ahmad Najib, Abd. Malik, Aktsar Roskiana Ahmad, Virsa Handayani, Rezki Amriati Syarif, Risda Waris
Fakultas Farmasi, Universitas Muslim Indonesia aktsar.roskiana@umi.ac.id

## ABSTRAK
Teh  hijau  memiliki  nama  spesies  Camellia  sinensis  (L.)  Kuntze,  family  Theaceae  dan  Jati  belanda (Guazuma  ulmifolia  Lam.)  termasuk  kedalam  family  sterculiaceae  Tujuan  Penelitian  ini  adalah  melakukan standarisasi ekstrak air daun jati belanda dan ekstrak air the hijau. Ekstrak distandardisasi dengan beberapa dua parameter yaitu parameter spesifik dan parameter non spesifik. Kadar sari larut air pada jati belanda 12,88 % dan teh  hijau  40,88,  sedangkan  kadar  sari  larut  etanol  pada  jati  belanda 4,  23  %  dan pada  teh  hijau  4,23  %.  Hasil pengujian kandungan kimia menunjukkan pada ekstrak jati belanda mengandung saponin dan flavonoid sedangkan pada teh hijau mengandung tannin dan flavonoid. Kadar air ekstrak daun jati belanda 0,95 % dan teh hijau 2,79%. Hasil kadar abu total jati belanda sebesar 37,61%  dan teh hijau 36,84 %. Kadar abu tidak larut asam yaitu pada jati belanda sebesar 3,54%  dan teh hijau 3,77%. Hasil dari penetapan susut pengeringan pada ekstrak jati belanda yaitu  0,46  %  dan  teh  hijau  0,46  %.  Ekstrak  jati  belanda  maupun  teh  hijau  berdasarkan  pengujian  standarisasi meliputi parameter spesifik dan no-spesifik memenuhi standarisasi mutu bahan baku.
Keywords: The Hijau, Jati Belanda, Standarisasi, Saponn, Flavonoid

## I. PENDAHULUAN
Obat tradisional dibuat dalam bentuk ekstrak karena tanaman obat tidak lagi praktis jika digunakan dalam bentuk bahan utuh (simplisia). Ekstrak tersebut bisa dalam bentuk ekstrak kering, ekstrak kental dan ekstrak  cair  yang  proses  pembuatannya  disesuaikan dengan  bahan  aktif  yang  dikandung  serta  maksud penggunaannya (Anam et al., 2013).
Pengembangan  obat  tradisional  diusahakan agar  dapat  sejalan  dengan  pengobatan  modern. Berbagai  penelitian  dan  pengembangan  yang memanfaatkan  kemajuan  tekhnologi  juga  dilakukan sebagai  upaya  peningkatan  mutu  dan  keamanan produk  yang  diharapkan  dapat  lebih  meningkatkan kepercayaan  terhadap  manfaat  obat  tradisional tersebut.  Pengembangan  obat  tradisional  juga didukung oleh Peraturan Menteri Kesehatan Republik Indonesia, tentang fitofarmaka, yang berarti diperlukan adanya pengendalian mutu simplisia yang akan  digunakan  untuk  bahan  baku  obat  atau  sediaan galenik (BPOM, 2005; Tjitrosoepomo, G., 1994).

## II. METODE PENELITIAN

## A. Waktu dan Lokasi Penelitian
Penelitian  ini  dilakukan  di  laboratorium Farmakognosi-Fitokimia Fakultas Farmasi Universitas Muslim Indonesia pada bulan November-Februari 2016.
B. Alat dan Bahan Alat yang digunakan adalah batang pengaduk, cawan porselin, Chamber (Camag ® ), gelas
piala  250  ml  Pirex ® ),  gelas  ukur  25  ml  dan  100  ml (Pirex ® ),  desikator,  kertas  saring  Whatman  no  42, kertas saring bebas abu, krus silikat, Labu Erlenmeyer (Pirex ® ), pipet volume (Pirex ® ), rotary  vacuum  evaporator (Buchi ® Rotavapor  R- 220),  tabung  reaksi  (iwaki  Pirex ® ),  spektrofotometri serapan  atom  (Aurora ® ),  sendok  tanduk,  tanur (Furnace ® ), dan timbangan analitik (Kern ® ). Bahan-bahan yang digunakan adalah aquadest,  aluminium  foil,  kertas  saring,  etanol  70%, asam nitrat (p.a), asam sulfat, larutan baku timbale (II) nitrat,  larutan  baku  cadmium,  dan  sampel  daun  jati belanda dan teh hijau
C. Prosedur Penelitian
1. Penyiapan alat dan bahan
Alat  dan  bahan  disiapkan  sesuai  dengan kebutuhan penelitian yang akan dilaksanakan.

## 2. Pengambilan dan Pengolahan Sampel
Sampel  daun  jati  belanda  dan  teh  hijau yang  telah  diperoleh  dibersihkan  dari  kotoran  yang melekat  dengan  cara  dicuci  dengan  air  mengalir kemudian dikeringkan dengan cara diangin-anginkan pada  tempat  yang  tidak  terkena  sinar  matahari langsung  kemudian  dipotong  kecil-kecil,  diserbukan dan siap untuk diekstraksi.

## 3. Metode ekstraksi
Ditimbang 500 gr daun jati belanda dan teh hijau, kemudian dimasukan kedalam bejana maserasi. Dituang  secara  perlahan  pelarut  etanol  kedalam
bejana maserasi yang berisi serbuk daun jati belanda dan  teh  hijau.  Kemudian  biarkan  cairan  penyari merendam  serbuk  simplisia  selama  3  hari  sesekali dilakukan  pengadukan,  dilakukan  remaserasi  hingga bening.  Selanjutnya  disari  kedalam  wadah  baru sehingga diperoleh ekstrak cair. Hasil penyarian dari ekstrak  diuapkan  dengan  menggunakan  rotavapor dibawah  titik  didih  hingga  diperoleh  ekstrak  kental (Ditjen POM, 2000).
4. Penetapan parameter spesifik
a. Parameter identitas ekstrak Parameter identitas ekstrak dilakukan dengan  tujuan  memberikan  identitas  objektif  dari nama tumbuhan. Deskripsi tata nama mencakup nama ekstrak, nama latin tumbuhan, bagian tumbuhan yang digunakan  serta  nama  Indonesia  tumbuhan  (Depkes RI, 2000).

## b. Uji organoleptik
Uji  organoleptik  merupakan  pengenalan awal  yang  sederhana  seobjektif  mungkin.  Uji organoleptik dilakukan dengan pengamatan terhadap bentuk, warna, bau, dan rasa (Depkes RI, 2000).

## c. Uji senyawa yang larut dalam air
Sejumlah 5 gram ekstrak dimaserasi selama 24  jam  dengan  100  ml  air-kloroform  menggunakan labu bersumbat sambil dikocok selama 6 jam pertama dan  kemudian  dibiarkan  selama  18  jam,  kemudian disaring.  Uapkan  20  ml  filtrate  hingga  kering  dalam cawan dangkal berdasar rata yang telah ditara. Residu dipanaskan  pada  suhu  105  ºC  hingga  bobot  tetap. Hitung kadar dalam persen senyawa yang larut dalam air terhadap berat ekstrak awal (Depkes RI, 2000).

## d. Kadar senyawa yang larut dalam etanol
Sejumlah 5 gram ekstrak dimaserasi selama 24  jam  dengan  100  ml  etanol  (95%)  menggunakan labu bersumbat sambil berkali-kali dikocok selama 6 jam pertama dan kemudian dibiarkan selama 18 jam. Disaring  cepat  dengan  menghindari  penguapan etanol, kemudian diuapkan 20 ml filtrat hingga kering dalam  cawan  penguap  yang  telah  ditera,  residu dipanaskan  pada  suhu  105ºC  hingga  bobot  tetap. Dihitung  kadar  dalam  persen  senyawa  yang  larut dalam etanol terhadap berat ekstrak awal (Depkes RI, 2000).
e. Uji kandungan kimia ekstrak
Profil KLT ekstrak
a. Uji terpenoid
Fase  gerak  dibuat  campuran  heksan– etilasetat  (1:1)  dimasukkan  ke  dalam  chamber  dan dibiarkan  sampai  jenuh.  Pada  plat  KLT  GF 254  p ditotolkan kira-kira 5  l sari heksan dan dimasukkan
pada  chamber,  dielusi  sampai  tanda,  diambil  dan dibiarkan  sampai  kering.  Ekstrak  mengandung terpenoid bebas bila dilihat dibawah sinar UV 365 nm berfluoresensi hijau / berwarna merah ungu atau biru dengan  pereaksi  asam  sulfat  pekat  10  %  dalam methanol (sthahl Egol, 1969).
b. Uji Alkaloid
Dibuat  fase  gerak  etilasetat  –  metanol  –  air (100:13,5:10) dimasukkan dalam chamber, dibiarkan sampai jenuh. Pada plat KLT GF 254 p ditotolkan kira- kira  5  l  masing  –  masing  sari  etil  asetat,  air, masukkan  dalam  chamber,  dielusi  sampai  tanda, diambil  dan  dibiarkan  sampai  kering.  Ekstrak mengandung alkaloid bebas bila dilihat dibawah sinar UV  365  nm  berfluoresensi  hijau  /  berwarna  jingga dengan pereaksi Dragendorf (sthahl Egol, 1969).
c. Uji Flavonoid
Dibuat fase gerak kloroform – etilasetat (6 :  4)  dimasukkan  dalam  chamber,  dibiarkan  sampai jenuh. Pada plat KLT GF 254 p ditotolkan kira-kira 5  l masing  –  masing  sari  etil  asetat,  air,  lalu  dimasukan dalam  chamber,  dielusi  sampai  tanda.  Ekstrak mengandung  flavonoid  bebas  bila  dilihat  dibawah sinar UV 365 nm berfluoresensi hijau / berwarna biru atau kuning dengan pereaksi sitro  borat (sthahl Egol, 1969).
5. Penetapan parameter non spesifik
a. Penetapan susut pengeringan Ekstrak ditimbang secara seksama sebanyak
1 g sampai 2 g dan dimasukan kedalam botol timbang dangkal  tertutup  yang  sebelumnya  telah  dipanaskan pada  suhu  105ºC  selama  30  menitdan  telah  ditara. Sebelum  ditimbang,  ekstrak  diratakan  dalam  botol timbang,  dengan  menggoyangkan  botol  hingga merupakan  lapisan  setebal  kurang  5  mm  sampai  10 mm,  kemudian  dimasuka  kedalam  ruang  pengering. Dibuka tutupnya, keringkan pada suhu 105ºC hingga botol  tetap.  Sebelum  setiap  pengeringan,  biarkan botol  dalam  keadaan  tertutup  mendingin  dalam eksikator  hingga  suhu  kamar.  Kemudian  keringkan kembali  pada  suhu  penetapan  hingga  bobot  tetap (Depkes RI, 2000).

## b. Kadar air Metode gravimetri
Masukan  lebih  kurang  1  gram  ekstrak  dan ditimbang  seksama  dalam  wadah  yang  telah  ditara. Keringkan  pada  suhu  105ºC  selama  5  jam  dan ditimbang. Lanjutkan pengeringan dan timbang pada jarak 1 jam sampai perbedaan antara 2 penimbangan berturut-turut  tidak  lebih  dari  0,25  %  (Depkes  RI, 2000).
c. Kadar abu
1. Penetapan kadar abu total
Lebih kurang 2 gram sampai 3 gram ekstrak yang telah digerus dan ditimbang seksama, dimasukan kedalam krus silikat yang telah dipijarkan dan ditara, ratakan. Pijarkan perlahan-lahan hingga arang habis, dinginkan,  timbang.  Jika  cara  ini  arang  tidak  dapat dihilangkan,  tambahkan  air  panas.  Saring  melalui kertas saring bebas abu. Pijarkan sisa kertas dan kertas saring dalam krus yang sama. Masukan filtrat kedalam krus. Uapakan, pijarkan ingga bobot tetap. Timbang, hitung  kadar  abu  terhada  bahan  yang  telah dikeringkan diudara (Depkes RI, 2000).

## 2. Penetapn  kadar  abu  yang  tidak  larut  dalam asam
Abu  yang  diperoleh  dari  penetapan  kadar abu,  didihkan  dengan  25  ml  asam  sulfat  encer  P selama  5  menit,  bagian  yang  tidak  larut  asam dikumpulkan,  disaring  melalui  kertas  saring  bebas abu,  dicuci  dengan  air  panas,  pijarkan  hingga  bobot tetap,  timbang.  Hitung  kadar  kadar  abu  yang  tidak larut  dalam  asam  terhadap  bahan  yang  telah dikeringkan di udara (Depkes RI, 2000).
3. Cemaran logam berat
Spektrofotometer AAs (Pb dan Cd)
a. Pembuatan kurva baku Pd dan Cd
Dari  larutan  baku  Pb(NO 3 ) 2 dipipet  5  ml kemudian  dicukupkan  volumenya  hingga  50  ml dengan HNO 3 2% dari larutan ini dipipet 1 ml, 2 ml, 3 ml, 4 ml, dan 5 ml. kemudian dimasukan kedalam labu tentukur  50  ml  dan  dicukupkan  volumenya  hingga batas  tanda.  Diperoleh  larutan  baku  dengan konsentrasi 2 bpj, 4 bpj, 6 bpj, 8 bpj dan 10 bpj.
Dari larutan baku Cd (NO 3 ) 2 1000 bpj dipipet 5 ml kemudian dicukupkan volumenya hingga 50 ml dengan HNO 3 2% (100 bpj). Dari larutan ini dipipet 1 ml, 2 ml, 3 ml, 4 ml dan 5 ml. kemudian dimasukan kedalam  labu  tentukur  100  ml  dan  dicukupkan volumenya  hingga  batas  tanda.  Diperoleh  larutan baku dengan konsentrasi 0,1 bpj, 0,2 bpj, 0,3 bpj, 0,4 bpj dan 0,5 bpj.
b. Larutan uji
Ditimbang  dengan  teliti  5  g  sampel kemudian dimasukan dalam beker gelas, ditambahkan 5  ml  HNO 3 p.a  dan  1  ml  HClO 4 p.a  lalu  didestruksi pada  suhu  200ºC  sampai  diperoleh  larutan  jernih, didinginkan  dan  disaring  menggunakan  kertas whatman  No  40-41.  Dimasukan  dalam  labu  ukur  50 ml, dan cukupkan volumenya dengan aquadest.
c. Pengukuran kadar logam
Kadar  logam  pb  diukur  menggunakan spektrofotometer serapan atom pada panjang
gelombang 217 nm, sedangkan kadar cadmium diukur pada panjang gelombang 288,8 nm.

## 4. Bobot jenis
Gunakan piknometer bersih, kering dan telah dikalibrasi dengan menetapkan bobot piknometer dan bobot  air  yang  baru  didihkan  pada  suhu  25ºC.  Atur hingga suhu ekstrak cair lebih kurang 20ºC, masukkan ke  dalam  piknometer.  Atur  suhu  piknometer  yang telah diisi hingga suhu 25ºC, buang kelebihan ekstrak cair  dan  ditimbang.  Kurangkan  bobot  piknometer kosong dari bobot piknometer yang telah diisi. Bobot jenis ekstrak dengan bobot air, dalam piknometer pada suhu 25ºC.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
Standarisasi  dalam  kefarmasian  tidak  lain adalah  serangkaian  parameter,  prosedur  dan  cara pengukuran  yang  hasilnya  merupakan  unsur-unsur terkait  paradigma  kefarmasian,  mutu  dalam  artian memenuhi syarat standar (kimia, biologi dan farmasi), termasuk  jaminan  batas-batas  stabilitas  sebagai produk  kefarmasian  umumnya.  Dengan  kata  lain, pengertian standarisasi juga berarti proses  menjamin bahwa  produk  akhir  obat  (obat,  ekstrak  atau  produk ekstrak)  mempunyai  nilai  parameter  tertentu  yang konstan dan ditetapkan terlebih dahulu. Terdapat dua faktor yang mempengaruhi mutu ekstrak yaitu faktor biologi  dari  bahan  asal  tumbuhan  obat  dan  faktor kandungan  kimia  bahan  obat  tersebut  (Depkes  RI 2000).
Standardisasi  adalah  proses  penetapan  sifat berdasarkan  parameter-parameter  tertentu  untuk mencapai  derajat  kualitas  yang  sama.  Ekstrak distandardisasi dengan beberapa dua parameter yaitu parameter spesifik dan parameter non spesifik (Handa et  al .,  2008).  Parameter  spesifik  meliputi  identitas, organoleptic,  senyawa  kimia  larut  air  dan  etanol, kandungan kimia. Sedangkan parameter non spesifik meliputi  susut  pengeringan,  kadar  air,  kadar  abu, cemaran logam dan bobot jenis.
Identitas  ekstrak  sangat  penting  dalam pengujian pendahuluan sebagai pengenalan awal dan bagain tanaman yang digunakan. Penelitian ini sesuai dengan  hasil  identifikasi  tanaman  menggunakan  teh hijau Camellia sinensis (L.) Kuntze, family Theaceae dan daun jati belanda Guazuma ulmifolia Lam. family sterculiaceae, pada penelitian ini bagian tanaman yang digunakan adalah daun (folium).
Uji  orngoleptik  pada  daun  jati  belanda  dan teh  hijau  merupakan  ekstrak  kering  bewarna  hijau kekuningan serta rasa  yang  sepat dikarenakan  kedua tanaman  ini  kaya  akan  senyawa  tannin  yang memberikan rasa sepat pada indera pengecapan.
Kadar sari larut air pada jati belanda 12,88% dan  teh  hijau  40,89%,  sedangkan  kadar  sari  larut
etanol  pada jati belanda 12,05 %,  dan pada teh hijau 4,23%.  Hasil  pada  pengujian  kadar  sari  larut  air memenuhi  persyaratan  mutu  karena  memiliki  kadar lebih  besar  dari  6%  (>6%).  Hasil  yang  berbeda ditunjukkan pada pengujian kadar sari larut etanol hal ini karena ekstrak yang digunakan adalah ekstrak air.
Pada proses ekstraksi metode yang diguankan  adalah  metode  maerasi  modifikasi microwave,  metode  ini  membutuhkan  waktu  yang lebih  singkat  dan  efisien  melihat  pelarit  yang diguakan  adalah  pelarut  air  sehingga  harus  dengan proses  ektraksi  yang  cepat.  Hasil  pengujian kandungan  kimia  menunjukkan  pada  ekstrak  jati belanda mengandung saponin dan flavonoid sedangkan  pada  teh  hijau  mengandung  tannin  dan flavonoid.    Pelarut  air  pada  proses  ekstraksi  lebih spesifik  ditargetkan  pada  senyawa-senyawa  polar seperti tannin, saponin dan flavonoid.
Tabel 1 . Hasil standardisasi parameter spesifik JB
No Pengujian Hasil 1 Identitas ekstrak Nama latin : Bagian tanaman : daun 2 Organoleptik Kental, rasa sepat, warna hijau 3 Kadar sari larut air 12,88 4 Kadar sari larut etanol 12,05 5 Kandungan kimia Saponin, flavonoid Tabel 2 . Hasil standardisasi parameter spesifik TH No Pengujian Hasil 1 Identitas ekstrak Nama latin : Bagian tanaman : daun 2 Organoleptik Kental, rasa sepat, warna hijau 3 Kadar sari larut air 40,89 4 Kadar sari larut etanol 4,23 5 Kandungan kimia Tanin, saponin
Penentuan  kadar  air  pada  ekstrak  bertujuan untuk memberi batasan minimal atau rentang tentang besarnya kandungan air dalam bahan (ekstrak,) makin tinggi kadar air, makin mudah untuk ditumbuhi jamur, kapang sehingga dapat menurunkan aktivitas biologi ekstrak  dalam  masa  penyimpanan.  Kadar  air tergantung pada waktu pengeringan simplisia, makin kering  makin  kecil  kadar  airnya.  Prinsipnya  yaitu menguapkan  air  yang  ada  pada  sampel  atau  dengan cara  pemanasan  pada  suhu  105°C  selama  5  jam
(Mutiatikum  2015,  h.  5).  Menurut  FHI  2000, umumnya  kandungan  kadar  air  yang  dipersyaratkan adalah kurang dari 10%. Sehingga dapat disimpulkan bahwa kadar air ekstrak daun jati belanda 0,96% dan teh hijau 2,80% memenuhi standar mutu.
Penentuan kadar abu diukur dengan memasukkan  ekstrak  ke  dalam  tanur  dengan temperatur  450 o C  sampai  terbentuk  abu.  Kadar  abu ditentukan dalam persenterhadap bobot awal.  Kadar abu total juga dapat digunakan sebagai landasan untuk mengetahui kandungan mineral internal dan eksternal yang berasal dari proses awal sampai akhir pembuatan ekstrak.  Hasil  kadar  abu  total  jati  belanda  sebesar 37,62%  dan teh hijau 36,84 %. Kadar abu tidak larut asam yaitu pada jati belanda sebesar 2,55%  dan teh hijau 3,54%.
Penetapan  susut  pengeringan  pada  ekstrak merupakan  salah  satu  persyaratan  yang  harus dipenuhi  dalam  standardisasi  tumbuhan  yang berkhasiat  obat  dengan  tujuan  dapat  memberikan batas  maksimal  (rentang)  tentang  besarnya  senyawa yang hilang pada proses pengeringan. Pada uji susut pengeringan ini dilakukan pengukuran sisa zat setelah pengeringan pada suhu 105°C selama 30 menit. Pada suhu 105°C air akan menguap dan senyawa-senyawa yang mempunyai titik didih yang lebih rendah dari air akan  ikut  menguap  juga  (Depkes  RI  2000).  Adapun hasil  dari  penetapan  susut  pengeringan  pada  ekstrak jati belanda yaitu 4,04% dan teh hijau 0,47%. Untuk parameter  susut  pengeringan  tidak  ada  syarat  atau rentang nilai yang diperbolehkan.
Tabel 3 . Hasil standardisasi parameter non spesifik JB
No Nama Kandungan (%) 1 Kadar air 0,96 2 Kadar abu total 37,62 3 Kadar  abu  tidak larut asam 2,55 4 Susut pengeringan 4,04 Tabel 4 . Hasil standardisasi parameter non spesifik TH No Nama Kandungan (%) 1 Kadar air 2,80 2 Kadar abu total 36,84 3 Kadar  abu  tidak larut asam 3,54 4 Susut pengeringan 0,47

## IV. KESIMPULAN
Ekstrak  jati  belanda  maupun  teh  hijau berdasarkan pengujian standarisasi meliputi parameter spesifik  dan  no-spesifik  memenuhi  standarisasi  mutu bahan baku.

## V. UCAPAN TERIMA KASIH
Ucapan  terima  kasih  tim  peneliti  ucapkan kepada Fakultas Farmasi UMI yang telah memfasilitasi penelitian ini dan Lembaga Penelitian dan Pengembangan  UMI  yang  telah  mendanai  penelitian ini.

## DAFTAR PUSTAKA
Anam,  S.,  Yusran,  M.,  Trisakti,  A.,  Ibrahim,  N., Khumaidi, A., Ramadanil, dan Zubair, M.S, 2013. Standarisasi Ekstrak Etil Asetat Kayu Sanrego ( Lunasia amara Blanco ), Jurnal Of Natural Science , Vol2. (3):1-8 BPOM RI., 2000. Parameter Standar Umum Ekstrak Tumbuhan  Obat .  Jakarta:  Departemen Kesehatan Republik Indonesia.
BPOM  RI.,  2004. Monografi  Ekstrak  Tumbuhan Indonesia, vol 1. Jakarta: Badan pengawasan Obat dan Makanan Republik Indonesia.
Direktorat Jenderal Pengawasan Obat dan Makanan,
1986.
Sediaan Galenik. Jakarta:  Departemen  Kesehatan  Republic
Indonesia.
Ebdon, L., Evans, E H. Fisher, A., dan Hill, S. J. 1998. An introduction  toanalitical
atomic spectrometry .  Chichester.  Jhon  Wiley  & Sons. Gandjar,  I.G.,  dan  Rohman,  Abdul,  2007. Kimia Farmasi  Analisis .  Penerbit  Pustaka  Pelajar. Yogyakarta. 298-318 Heyne, K., 1987, Tumbuhan Berguna Indonesia Jilid II, Departemen  Kehutanan,  Terjemahan Badan Litbang Kehutanan: Jakarta Hariyati,  S.,  2005,  Standarisasi  Ekstrak  Tumbuhan Obat Indonesia, Salah Satu Tahapan Penting dalam  Pengembangan  Obat  Asli  Indonesia, InfoPOM, 6(4), 1-5 Info  POM,  2005.  Standarisasi  Ekstrak  Tumbuhan Obat Indonesia, Salah Satu Tahapan Penting Dalam Pengembangan Obat Asli Indonesia. Badan POM RI , Vol.6, No. 4, 1-5. Khoirani,  N.,  2013,  Karakterisasi  Simplisia  dan Standarisasi Ekstrak Etanol Herba Kemangi ( Ocimum  americanum L) Skripsi ,  Jurusan Farmasi UIN Syarif Hidayatullah, Jakarta Perkin-Elmer Corporation. 1996. Analytical methods for  atomic  absorption  spectroscopy .  USA: Perkin.Elmer Puro, I., 2012, Kajian Aktivitas Antibakteri Daun jati belanda  dan  teh  hijau (Roxb.)  Wedd.)  Dan Daun  Benalu  Cengkeh, Skripsi ,  Fakultas Teknologi  Pertanian  Institut  Pertanian, Bogor. Putri, E., Anggraeni, Y., Khairina., 2012. Standarisasi Ekstrak  Etanol  daun  Pegagan (Centella asitica L Uraban) Yang Berasal Dari Malang
dan  Penetapan  Kadar  Asiatikosida, Skripsi , Jurusan  Farmasi  UIN  Syarif  Hidayatullah, Jakarta
Rustian.,  1993.  Pemeriksaan  Jumlah  Total  Cemaran Bakteri  dan  Kapang  Serta  Identifikasi Aspergillus  Flavus  Pada  Sediaan  Jamu Bubuk  di  Beberapa  Tempat  Penjualan  di Kotamadya Padang , Skripsi , S.Farm.,
Fakultas MIPA, UNAND, Padang.
Sthahl  E.,  1969. Thin  Layer  Chrmatography , Heidelberg, New York
Saefudin,  A.,  Rahayu,  Teruna,  2011, Standarisasi Bahan Obat Alam . Graha Ilmu: Yogyakarta Tjitrosoepomo,  G.,  1994, Taksonomi  Tumbuhan Obat-obatan .  Gadjah  Mada  University Press: Yogyakarta. 421-423 Vandecasteele,  C.,  Block,  C.  B.,  1993. Modern Methods For Trace Element Determination, John Wiley and Sons, New York. Welz,  B.,  dan  Michael,  S.  2005. Atomic  Absoption spectrometry Ed. Ke-3 . New York World Health Organization, 2009. Medicinal plants in Papua New Guinea . Manila:  World Health Organization, regional office for the Western Pacific.