AKTIVITAS ANTIBAKTERI INFUSA DAUN LIDAH BUAYA ( Aloe vera L)

## TERHADAP PERTUMBUHAN Staphylococcus aureus
dan Escherichia coli
Yuni Widyastuti, Nia Yuliani * , I Gusti Ayu Manik W Program Studi Biologi FMIPA Universitas Nusa Bangsa Bogor Jl. KH. Sholeh Iskandar KM 4 Cimanggu Tanah Sareal Bogor 16166
*email : niayuliani0412@gmail.com

## ABSTRACT
Antibacterial Activity of Infused Aloe Vera Leaf (Aloe Vera L) on Growth Of Stapylococcus aureus and Escherichia coli
Disinfectants  may  act  as  antibacterials.  Aloe  vera  (Aloe  vera  L)  is  one  of  the  plants  that  is  often  used  by  the community  as  a  medicinal  plant  that  has  many  active  compounds  such  as  lignin,  saponin  and  anthraquinone substances that act as antibacterial. This study aims to determine the antibacterial activity of Aloe vera leaf extracted with infusa method on the growth of Staphylococcus aureus and Escherichia coli bacteria. The research method is to see  the  reduction  /  reduction  of  bacterial  count  (%  reduction)  after  30  second  and  60  second  with  disc  diffusion method. The results showed decrease or decrease of bacteria count (% reduction) to Escherichia coli bacteria found in aloe leaf skin infected by 28,2% after 60 seconds. While decrease or decrease of bacteria amount (% reduction) to Staphyloccocus  uareus  bacteria  infusa  mixture  of  meat  and  skin  of  Aloe  vera  leaves  of  27.5%  after  60  seconds. Antibacterial test of aloe vera leaf aloe (Aloe veraL) of 100% concentration by disc diffusion method did not show any inhibition zone around cultures of test bacteria.
Keywords: Aloe vera, antibacterial activity, Staphylococcus aureus, and Escherichia coli, Infusa.

## ABSTRAK
Desinfektan dapat berfungsi sebagai antibakteri. Lidah buaya ( Aloe vera L) merupakan salah satu tanaman yang sering digunakan masyarakat sebagai tanaman obat yang memiliki banyak senyawa aktif seperti lignin, saponin dan  antrakuinon  yaitu  zat  yang  berfungsi  sebagai  antibakteri.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  aktivitas antibakteri  daun  lidah  buaya  ( Aloe  vera L)  yang  diekstrak  dengan  metode  infusa  terhadap  pertumbuhan  bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli. Metode penelitian yaitu dengan melihat penurunan/pengurangan jumlah bakteri (% reduksi) setelah waktu 30 detik dan 60 detik dengan metode difusi cakram. Hasil penelitian menunjukkan penurunan atau pengurangan jumlah bakteri (% reduksi) terhadap bakteri Escherichia coli terdapat pada infusa kulit daun lidah buaya yaitu sebesar 28,2 % setelah waktu 60 detik.Sedangkan penurunan atau pengurangan jumlah bakteri (% reduksi) terhadap bakteri Staphyloccocus uareus terdapat pada infusa campuran daging dan kulit daun lidah buaya yaitu sebesar 27,5 % setelah waktu 60 detik.  Uji antibakteri infusa daun lidah buaya ( Aloe vera L) konsentrasi 100% dengan metode difusi cakram tidak menunjukkan adanya zona penghambatan disekitar biakan bakteri uji.
Kata kunci : Lidah buaya, Aktivitas antibakteri, Staphylococcus aureus , dan Escherichia coli, Infusa.

## PENDAHULUAN
Bakteri  merupakan  mahluk  hidup mikroskopik  yang  memiliki  peran  besar dalam  kehidupan  di  bumi.  Bakteri  dapat ditemukan  dihampir  semua  tempat  ;  di tanah,  air,  udara,  dalam  simbiosis  dengan organisme  lainnya  maupun  sebagai  parasit (penyebab  penyakit),  bahkan  dalam  tubuh manusia. Beberapa kelompok bakteri
dikenal  sebagai  agen  penyebab  infeksi  dan
penyakit,  sedangkan  kelompok  lainnya dapat memberikan manfaat dibidang pangan,  pengobatan  dan  industri  (Pelczar, 1986).
Bakteri  yang  ada  di  sekitar  kita dapat  menyebabkan  penyakit  tetapi  ada pula  yang  sangat  penting  bagi  kehidupan manusia  seperti  bakteri Escherichia  coli dan
Staphylococcus aureus yang merupakan bakteri flora normal
(mikrofloranormal)    pada  manusia.  Bakteri
Staphylococcus  aureus merupakan  bakteri floranormal  pada  kulit  dan  selaput  lendir manusia. Staphylococcus  aureus dapat menjadi  penyebab  infeksi  kerusakan  pada kulit atau luka pada organ tubuh jika bakteri ini mengalahkan pertahanan tubuh (immunitas).  Saat  bakteri  masuk  ke peredaran  darah  bakteri  dapat  menyebar  ke organ  lain  dan  menyebabkan  infeksi (Anwar,2009 dalam Melki dkk., 2011). Escherichia  coli adalah  kuman yang  ditemukan  di  usus  besar  manusia sebagai  floranormal.  Bakteri  ini  dapat menyebabkan  infeksi  primer  pada  usus misalnya  diare  pada  anak.  Di  dalam  usus kuman  ini  tidak  menyebabkan  penyakit, tetapi  dapat  membantu  fungsi  normal  dan nutrisi.  Bakteri Escherichia  coli menjadi patogen  hanya  bila  mencapai  jaringan  di luar  saluran  pencernaan  khususnya  saluran air  kemih,  saluran  empedu,  paru  –  paru, peritonium, atau selaput otak, menyebabkan peradangan  pada  tempat  –  tempat  tersebu (Jawetz, 1986).
Keberadaan  bakteri  yang  hidup  di bagian  tubuh  tertentu  pada  manusia mempunyai peran penting
dalam mempertahankan  kesehatan  dan  hidup secara  normal.Tetapi  bakteri  tersebut  juga dapat  menimbulkan  penyakit  pada  kondisi tertentu.  Bakteri  ini  tidak  bisa  tembus  ( non invasive ) dengan adanya hambatan-
hambatan yang diperankan oleh
lingkungan.  Jika  hambatan  dari  lingkungan dihilangkan  dan  bakteri  masuk  ke  dalam jaringan  atau  aliran  darah,  bakteri  ini mungkin  menjadi  patogen.  Salah  satu  cara penghambatan  terhadap  bakteri  ini  adalah dengan  penggunaan  desinfektan  yang berfungsi sebagai antibakteri (Jawetz,1986).
Antibakteri  merupakan  zat  yang dapat  menghambat  pertumbuhan  bakteri dan  digunakan  untuk  mengobati    infeksi. Antibakteri  terdiri  dari  senyawa-senyawa aktif  baik  kimia  sintetik  atau  produk  alami yang  dapat  menghambat  pertumbuhan bakteri.  Salah  satu  tumbuhan  yang  sering digunakan  masyarakat  sebagai  tanaman obat adalah tanaman lidah buaya ( Aloe vera L). Lidah buaya mempunyai kandungan zat gizi  yang  diperlukan  tubuh  dengan  cukup lengkap,  yaitu  vitamin  A,  B,  C, E,  choline, inositol  dan    asam  folat.  Kandungan
mineralnya antara lain terdiri dari : kalsium (Ca),  magnesium  (Mg),  potasium,  sodium, besi  (Fe),  zinc  (Zn),  dan  cromium  (Cr). Beberapa  unsur  vitamin  dan  mineral tersebut dapat berfungsi sebagai pembentuk antioksidan  alami,  seperti  vitamin  A, vitamin C, vitamin E, magnesium, dan zinc. Daun lidah buaya segar mengandung enzim amilase,  selulosa,  carboxypeptidase  dan lain-lain.  Selain  itu  lidah  buaya  juga mengandung sejumlah asam amino arginin, asparagin,  asam  aspartat,  alanin,  serin, valin,  glutamate,  treonin,  glisin,  lisin, prolin, hisudin, leusin dan isoleusin. Daging daun  lidah  buaya  juga  memiliki  banyak senyawa  aktif  seperti  lignin,  antrakuinon (yaitu zat yang berfungsi sebagai antibakteri) dan saponin (Jamal, 2015). Berdasarkan    latar  belakang  diatas maka  perlu  dilakukan  penelitian    yang bertujuan untuk menguji aktivitas antibakteri daun lidah buaya yang diekstrak dengan cara infundasi dalam mempengaruhi pertumbuhan bakteri Escherichia coli dan bakteri
Staphylococcus aureus.

## BAHAN DAN METODE
Bahan dan Alat Bahan yang digunakan dalam
penelitian  ini  adalah    daun  lidah  buaya ( Aloe  vera) berasal  dari  kebun  lidah  buaya Atang  Sandjaja  (ATS)  Bogor,    bakteri Escherichia  coli ATCC  8739  dan  bakteri Staphylococcus  aureus ATCC  6538  yang diperoleh  dari  Biofarma,  NaCl  fisiologis 0,85%,    Trypticase  Soy  Agar,    Trypticase Soy Broth, Nutrient Agar dan aquadest.
Alat    yang  digunakan  adalah  tabung reaksi,  gelas  ukur,  cawan  petri,  batang pengaduk,  alat  ukur  berat, water  bath , inkubator,  pengukur  waktu,  pisau,  sendok, corong  pisah,  mikropipet, autoclave ,  kertas saring, alat pencacah.

## Metode
1. Determinasi Tanaman Determinasi
dilakukan untuk memastikan  kebenaran  bahan  yang  akan digunakan  dalam  penelitian.  Determinasi dilakukan  di  Pusat  Penelitian  Biologi  –
Lembaga  Ilmu  Pengetahuan  Indonesia (LIPI) di Cibinong, Bogor.

## 2. Teknik  Pengambilan  Sampel  Lidah Buaya
Sampel  daging  daun  lidah  buaya yang  digunakan  diperoleh  dari  kebun  lidah buaya  Atang  Sendjaja  (ATS)  Bogor.  Daun lidah  buaya  yang  digunakan  adalah  yang tua  yaitu    daun  yang  terletak  paling  bawah (daun  1  dan  2)  yang  diambil  dari  beberapa tanaman  lidah  buaya  secara  acak  pada  satu petak  kebun  lidah  buaya  dengan  umur tanaman yang sama.

## 3. Infusa Lidah buaya
Lidah  buaya  dicuci,  dikupas  untuk diambil daging daunnya, kemudian ditimbang sebanyak 100 gram dan diletakkan  dalam  gelas  ukur  ukuran  1500 ml. Ditambahkan air sebanyak 1000 ml dan diletakkan  ke  dalam  water  bath  dengan suhu  95°  C  selama  15  menit.  Setelah    itu, campuran  yang  masih  panas  disaring  ke dalam  gelas  ukur  dengan  menggunakan corong  kaca  yang    telah  dilapisi  kain  kassa dan  kertas  saring.    Cairan  infus  hasil penyaringan  diuapkan  dalam  water  bath dengan suhu 95 o C selama 120 menit sambil diaduk sesekali, sehingga cairan infus susut dari  1000  cc  menjadi  100  cc  dan  diperoleh konsentrasi  infusum  lidah  buaya  100% (Iriano,2008).

## 4. Pembuatan  Larutan  Bakteri  Uji
(Dahlan & Arief F, 1990)
Trypticase  Soy  Broth disiapkan  dalam tabung  reaksi  sebanyak  10  mL.  Biakan murni  bakteri  uji  pada  agar  miring  NA diinokulasikan  ke  dalam  media Trypticase
Soy  Broth dengan  cara  memipet  satu  ml Trypticase Soy Broth
kemudian dimasukkan ke dalam biakan murni bakteri uji  pada  agar  miring  NA.  Bakteri  yang  ada pada  permukaan  agar  miring  diemulsikan dengan menggunakan pipet atau ose sampai tidak  ada  lagi  bakteri  yang  tertinggal  pada permukaan  agar  miring. Trypticase  Soy Broth yang    terdapat  pada  tabung  agar miring  dimasukkan  kembali  ke  dalam tabung  reaksi  yang  berisi Trypticase  Soy Broth dan  prosedur  ini  di  ulangi  sampai
benar-benar  tidak  ada  lagi  mikroba  yang tertinggal.  Tabung  yang  telah  berisi  10  ml Trypticase  Soy  Broth dan  bakteri  tersebut kemudian  diinkubasikan  pada  suhu  37 o C selama  24  jam.    Kemudian  dibuat    seri pengenceran dengan NaCl fisiologis sampai pengenceran  10 -11 atau  tergantung  dengan populasi  bakteri  yang  diduga.  Sebanyak satu  mL  suspensi  pada  masing-masing pengenceran  dipipet  ke  dalam  cawan  petri yang  berisi  media Trypticase  Soy  Agar . Cawan petri berisi media agar dan suspensi bakteri  tersebut  diinkubasi  pada  suhu  37 o C
selama  24  jam.  Koloni  yang  tumbuh dihitung dan dicatat dalam satuan
koloni/mL.  Berdasarkan  nilai  koloni/mL hasil  perhitungan,  diperoleh  jumlah  bakteri sebagai berikut :
Staphyloccocus  aureus =    8,0  x  10 7 koloni/ml Escherichia  coli =    9,9  x  10 6 koloni/ml.
5. Uji  Antibakteri  (menurut  AOAC,
2000)
Uji yang digunakan adalah menentukan adanya pengurangan atau penurunan jumlah bakteri setelah bakteri uji hasil perhitungan yang  diperoleh  di  campur  dengan    infusa daun  lidah  buaya  selama  30  detik  dan  60 detik.  Konsentrasi  infusa  lidah  buaya disiapkan  dalam  tabung  reaksi  sebanyak 100  ml.  Sebanyak  satu  ml  larutan  bakteri uji  hasil  perhitungan  dimasukkan  ke  dalam tabung  reaksi  yang  berisi  100  ml  infusa lidah buaya.Campur perlahan agar homogen,  dari  campuran  tersebut  dibuat pengenceran  dari  10 -1 sampai  10 -6 dengan cara  mengambil  1  ml  campuran  (ekstrak  + bakteri)  ditambah  9  ml  NaCl  fisiologis  (= pengenceran  10 -1 ),  dari  pengenceran  10 -1 diambil 1 ml ditambah 9 ml NaCl fisiologis (=  pengenceran  10 -2 ).  Begitu  selanjutnya sampai  diperoleh  pengenceran  10 -6 . Nyalakan pengukur waktu, setelah 30 detik, ambil  1  ml  dari  setiap  pengenceran  tadi kemudian  diinokulasikan  pada  cawan  petri yang berisi Trypticase Soy Agar. Setelah 60 detik  kemudian  ambil  lagi  1  ml  dan  di inokulasi  pada  cawan  petri  yang  berisi Trypticase Soy Agar. Diinkubasi pada suhu 37 ° C  selama  24  jam  dalam  inkubator. Dilihat  ada  tidaknya  pertumbuhan  koloni
pada  setiap  masing-masing  pengenceran. Koloni  yang  tumbuh  dicatat  dan  di  hitung, hasil perhitungan dinyatakan dalam persen.
Adanya penurunan atau pengurangan
jumlah bakteri menandakan adanya pengaruh  antibakteri  daging  daun  lidah buaya terhadap pertumbuhan bakteri uji.
6. Uji Antibakteri Metode Difusi Cakram (SNI,2008) Satu ml larutan bakteri uji diinokulasikan ke dalam tabung yang berisi 100    ml  Nutrient  Agar  yang  bersuhu  ±  45° C.  Campurkan  perlahan  –  lahan  sampai homogen,  kemudian  dituangkan  ke  dalam cawan  petri  sebanyak  15  ml.  Biarkan Nutrient  Agar  yang  telah  mengandung bakteri  uji  tersebut  membeku.  Setelah membeku diletakkan kertas cakram berdiameter 8 mm yang telah ditetesi infusa daging  daun  lidah  buaya  sebanyak  75µl  di tengah-tengah  cawan  petri.  Teteskan  juga pada kertas cakram antibiotik kloramfenikol  125  mg/ml  sebagai  kontrol positif  dan  aquadest  steril  sebagai  kontrol negatif. Simpan cawan petri dalam inkubator  pada  suhu  37°  C  selama  24  jam. Aktifitas  antibakteri  dapat  dilihat  dengan terbentuknya  zona  hambat  berupa  daerah bening di sekitar kertas cakram pada cawan petri.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Determinasi Tanaman
Tanaman Lidah buaya hasil determinasi  yang  dilakukan  di  Pusat
Penelitian  Biologi  LIPI  cibinong  Bogor, yang digunakan dalam penelitian ini adalah tanaman  Lidah  buaya  jenis Aloe  vera (L) Burn.f.  Daun  yang  digunakan  adalah  daun lidah  buaya    yang  berdaging  tebal  dengan berat  pelepah  antara  0,5  –  I  kg,  berwarna hijau  keabu-abuan  dan  mempunyai  lapisan lilin di permukaannya.
Infusa Lidah Buaya ( Aloe vera L) Hasil  infusa  lidah  buaya  ( Aloe  vera L) dari masing – masing bagian daun lidah buaya  menimbulkan  warna  –  warna  yang berbeda.  Infusa  daging  daun  berwarna merah  muda,  infusa  kulit  daun  berwarna hijau  kekuningan , infusa campuran daging
dan  kulit  daun  memberikan  warna  merah jingga.  Perubahan  warna  yang  terjadi  pada infusa  dimungkinkan  disebabkan  adanya pemanasan yang  lama pada saat pembuatan infusa  dan  adanya  sifat  air  yang  dapat melarutkan  zat  warna  pada  tumbuhan  atau juga  karena  terjadi  oksidasi  dan  adanya pengaruh langsung sinar matahari. Gel atau daging lidah buaya bersifat  koloidal seperti lendir, terutama jika pHnya mendekati basa (saat  masih  segar)  bentuknya  berupa  gel sangat  lekat,  tetapi  jika  pHnya  mendekati asam (saat daun  layu) akan berubah wujud menjadi sol yang bersifat lebih encer seperti sirup.  Penurunan  kekentalan  daging  daun lidah  buaya  disebabkan  karena  adanya hidrolisa  polisakarida  oleh  enzim  yang masih  mempunyai  aktivitas  tinggi  dan diikuti  oleh  perubahan  warna  menjadi gelap.  Daging  (gel)  lidah  buaya  memiliki sifat  sangat  mudah  teroksidasi  karena mengandung  enzim  oksidase  sehingga  gel akan berubah warna menjadi kuning hingga coklat. Kandungan asam organik dalam gel lidah  buaya  berubah  -    ubah  tergantung kondisi  penyimpanan  daun  lidah  buaya. Adanya  kuinon  dan  antrakuinon  dalam daging  lidah  buaya  dengan  adanya  cahaya akan menyebabkan perubahan warna menjadi  kemerah-merahan  dan  akhirnya membentuk warna coklat. Perubahan warna ini  dapat  terjadi  secara  enzimatis  dan  non enzimatis.  Pada  daging  daun  lidah  buaya proses  oksidasi  dengan  adanya  oksigen dapat juga menyebabkan terbentuknya aloin (C 22 H 22 O 9 )  yang  dikenal  sebagai  bahan kontaminator  (Adha  P.W,  2011).  Ini merupakan  hal  yang  tidak  diharapkan dalam  suatu  pemeriksaan  karena  dapat menjadi bahan pengganggu.

## Uji Antibakteri
Penurunan atau pengurangan jumlah  bakteri  (%  reduksi)    terhadap
Staphylococcus  aureus terlihat  bahwa aktivitas  antibakteri  lebih  banyak  terdapat pada  infusa  campuran  daging  dan  kulit daun  lidah  buaya    dalam  waktu  30  detik yaitu  sebesar  17,5  %  dan  dalam  waktu  60 detik sebesar 27,5 %.
Penurunan atau pengurangan jumlah bakteri  (%  reduksi)    terhadap Escherichia coli dalam  waktu  30  detik  dan  60  detik
dapat dilihat  Tabel 1 dan 2 serta  Gambar 1 dan 2. Aktivitas antibakteri  infusa terhadap Escherichia coli lebih banyak terdapat pada
infusa  kulit  daun  lidah  buaya  yaitu  sebesar 21,2  %  dan  dalam  waktu  60  detik  sebesar 28,3 %.
Tabel 1 .Hasil Uji Penurunan Bakteri (% Reduksi) Waktu 30 Detik
Sampel Bakteri Uji Hasil Uji Total Bakteri % Reduksi Pengenceran -2 -3 -4 -5 -6 -7 Infusa daging daun S. aureus Tbud  Tbud Tbud Tbud 79 10 7,9 x 10 7 1,2 E. coli Tbud  Tbud Tbud 87 7 0 8,7 x 10 6 12,1 Infusa kulit daun S. aureus Tbud  Tbud Tbud Tbud 76 13 7,6 x 10 7 5,0 E. coli Tbud  Tbud Tbud 78 15 3 7,8 x 10 6 21,2 Infusa daging& kulit S. aureus Tbud  Tbud Tbud Tbud 66 10 6,6 x 10 7 17,5 E. coli Tbud  Tbud Tbud 89 7 1 8,9 x 10 6 10,1
Keterangan : Tbud  = Tidak bisa untuk dihitung
Gambar 1. % Reduksi Jumlah Bakteri S. aureus dan E.coli dalam 30 detik pada infusa daun lidah buaya 0 5 10 15 20 25 Daging daun Kulit daun Daging dan kulit daun % R e d u ksi S. aureus E.coli
Tabel 2. Hasil Uji Penurunan Bakteri (% Reduksi) Waktu 60 Detik
Sampel Bakteri uji Hasil Uji Total Bakteri % Reduksi Pengenceran -2 -3 -4 -5 -6 -7 Infusa daging daun S. aureus Tbud  Tbud  Tbud  Tbud 67 7 6,7 x 10 7 16,2 E. coli Tbud  Tbud  Tbud 75 11 2 7,5 x 10 6 24,0 Infusa kulit daun S. aureus Tbud  Tbud  Tbud  Tbud 75 6 7,5 x 10 7 6,2 E. coli Tbud  Tbud  Tbud 71 12 1 7,1 x 10 6 28,3 Infusa daging& kulit S. aureus Tbud  Tbud  Tbud  Tbud 58 9 5,8 x 10 7 27,5 E. coli Tbud  Tbud  Tbud 74 7 0 7,4 x 10 6 25,2
Keterangan : Tbud  = Tidak bisa untuk dihitung
Gambar 2. % Reduksi Jumlah Bakteri S. aureus dan E. coli dalam 60 detik pada infusa daun lidah buaya
Hasil penurunan jumlah bakteri (% reduksi) terhadap  bakteri Staphylococcus  aureus diperoleh  hasil  bahwa  pada  pengujian dalam waktu 30 detik nilai terbesar terdapat pada  sampel  infusa  campuran  daging  dan kulit daun lidah buaya yaitu sebesar 17,5 % pada  pengenceran  10 -6 dan  nilai  terkecil terdapat  pada  infusa  daging  daun  lidah buaya  yaitu  1,2  %  pada  pengenceran  10 -6 . Sedangkan dalam waktu 60 detik penurunan  jumlah  bakteri  (%  reduksi)
terbesar  adalah  pada  infusa  campuran daging  dan  kulit  daun  lidah  buaya  sebesar 27,5  %  pada  pengenceran  10 -6 dan  nilai terkecil  adalah  infusa  kulit  daun  lidah buaya sebesar 6,2 % pada pengenceran 10 -6 . Hasil  uji  antibakteri  pada Escherichia  coli penurunan  jumlah  bakteri  terbesar  selama waktu  30  detik  terjadi  pada  infusa  kulit daun  lidah  buaya  sebesar  21,2  %  pada pengenceran  10 -5 dan  terkecil  pada  infusa daun  (campuran  daging  dan  kulit)    lidah
0 5 10 15 20 25 30 Daging daun Kulit daun Daun % R e d u ksi S. aureus E. coli
buaya sebesar 10,1%   pada  pengencera 10 - 5 .  Sedangkan  dalam  waktu  60  detik penurunan  jumlah bakteri Escherichia coli terdapat pada  infusa kulit daun lidah buaya yaitu sebesar 28,3 % pada pengenceran 10 -5 dan  yang  terkecil  pada  infusa  daging  daun lidah  buaya  yaitu  24.0%  pada  pengenceran 10 -5 .
Secara  umum  berdasarkan  hasil  uji antibakteri  daun  lidah  buaya  menurut metode  AOAC  (tahun  2000)  dengan melihat  penurunan  jumlah  bakteri,  infusa bagian  dari  daun  lidah  buaya  yang mempunyai  potensi  antibakteri  adalah terletak  pada  bagian  kulit  daun  dan  pada daun  (  campuran  kulit  dan  daging  daun) lidah  buaya.  Lamanya  waktu  kontak  antara bakteri  uji  dan  ekstrak  (infusa)  lidah  buaya pun  mempengaruhi  terjadinya  penurunan jumlah bakteri. Semakin lama waktu kontak semakin  besar  nilai  penurunan  jumlah
bakteri  yang  terjadi.  Hal  ini  juga  berkaitan dengan jumlah mikroorganisme yang mempengaruhi kerja antibakterinya, artinya semakin  banyak  jumlah  mikroorganisme yang  ada  maka  makin  banyak  pula  waktu yang  diperlukan  untuk  membunuhnya (Pelczar,1988).  Menurut  standar  AOAC 2000  nilai  yang  paling  baik  suatu  zat antibakteri  yang  dapat  digunakan  sebagai desinfektan  adalah  99,9  %.  Konsentrasi terendah  dari  suatu  antibakteri  yang  dapat membunuh 99,9 % bakteri disebut Konsentrasi  Bakterisid  Minimal  (KBM)
(Rachman,  2011).  Dari  hasil  uji  tersebut bila dibandingkan dengan  nilai Konsentrasi Bakterisid    Minimal  (KBM)  99,9  %, ekstrak  lidah  buaya  dengan  metode infundasi mempunyai daya antibakteri yang sangat  kecil.  Perbandingan  nilai  tersebut dapat dilihat pada Tabel 3 dan 4.
Tabel  3.  Perbandingan  Konsentrasi  Kandungan  Zat  Antibakteri  Infusa  Lidah  Buaya  Dengan Nilai KBM  99,9 % Terhadap Bakteri Uji Setelah 30 Detik
Sampel infusa lidah buaya Staphyloccocus aureus Escherichia coli Daging daun 1,2 % : 99,9 %  =  0,012 % 12,1 % : 99,9 %  =  0,12 % Kulit daun 5 % : 99,9 %  =  0,05 % 21,2 % : 99,9 %  =  0,21 % Daun(daging&kulit daun) 17,5 % : 99,9 %  =  0,17 % 10,1 % : 99,9 %  =  0,10 %
Tabel  4.  Perbandingan  Konsentrasi  Kandungan  Zat  Antibakteri  Infusa  Lidah  Buaya  Dengan Nilai KBM 99,9 % Terhadap Bakteri Uji Setelah 60 Detik
Sampel infusa lidah buaya Bakteri Staphyloccocus aureus Bakteri Escherichia coli Daging daun 16,2 % : 99,9 %  =  0,16 % 24 % : 99,9 %  =  0,24 % Kulit daun 6,2 % : 99,9 %  =  0,62% 28,2 % : 99,9 % =  0,28 % Daun (daging& kulit daun) 27,5 % : 99,9 %  =  0,27 % 25,2 % : 99,9 % =  0,25 %
Potensi  daya  antibakteri  ekstrak daun  lidah  buaya  dengan  metode  infundasi didapatkan hasil dalam jumlah  sangat kecil (sedikit)  karena  pembuatan  ekstrak  dengan cara  infundasi  ini  menggunakan  pelarut  air sebagai penyari zat aktif. Menurut Farmakope  Indonesia  menetapkan  bahwa sebagai penyari adalah air, etanol, etanol-air atau  eter.  Air  dipertimbangkan  sebagai penyari karena murah dan mudah diperoleh, stabil,  alamiah,  tidak  beracun,  tidak  mudah menguap  dan  tidak  mudah  terbakar.Tetapi kerugian  penggunaan  air  sebagai  penyari adalah  air  tidak  selektif  dalam  menarik  zat aktif,  sari  yang  diperoleh  dapat  ditumbuhi kapang  dan  kuman  serta  cepat  rusak,  dan untuk  pengeringannya  perlu  waktu  lama. Air  disamping  melarutkan  garam  alkaloid, minyak menguap, glikosida, tanin dan gula, juga  melarutkan  gom,  pati,  protein,  lendir, enzim,  lilin,  lemak,  pektin,  zat  warna  dan asam  organik.  Sehingga  penggunaan  air sebagai cairan penyari kurang
menguntungkan,  disamping  zat  aktif  ikut tersari  juga  zat  lain  yang  tidak  diperlukan atau  malah  mengganggu  proses  pembuatan sari  seperti  gom,  pati,  protein,  lemak, enzim,  lendir  dan  lain  –  lain  (Depkes RI,1979). Terbentuknya kontaminator dalam infusa lidah buaya juga memungkinkan  menjadi  salah  satu  faktor berkurangnya  daya  antibakteri  dari  infusa daun lidah buaya.

## Uji  Antibakteri  Dengan  Cara  Difusi Cakram (SNI,2008)
Hasil  uji  antibakteri    dengan metode  difusi  cakram  infusa  lidah  buaya dari  setiap  bagian  daun  lidah  buaya  yaitu infusa daging daun lidah buaya, infusa kulit daun lidah buaya dan infusa campuran kulit dan  daging  daun  lidah  buaya  tidak menunjukkan  adanya  zona  hambatan    pada biakan  bakteri Staphyloccocus  aureus dan biakan  bakteri Escherichia  coli. Hasilnya tidak  berbeda  dengan  kontrol  negatif, sedangkan  kontrol positif dengan antibiotik kloramfenikol  125  mg/ml  menunjukkan zona  rata  –  rata  sebesar  32,27  mm  pada biakan Staphyloccocus aureus dan zona rata –  rata  sebesar  29,21  mm  pada  bakteri
Escherichia  coli. Hasil  tersebut  dapat dilihat pada Gambar 3, 4, 5.
Menurut  penelitian  Iriano  (2008), hasil  uji  identifikasi  fitokimia  infusa  lidah buaya  ditemukan  kandungan  a ntrakuinon , tanin dan fenol .  Antrakuinon  dalam  lidah buaya  ternyata  mampu  berperan  sebagai antibiotik  yang  bersifat  bakteriostatik. Tanin  dalam  konsentrasi  rendah  mampu menghambat pertumbuhan bakteri, sedangkan  pada  konsentrasi  tinggi  mampu bertindak  sebagai  antibakteri  dengan  cara mengkoagulasi atau menggumpalkan protoplasma  bakteri  sehingga  terbentuk ikatan  yang  stabil  dengan  protein  bakteri (Amelia.L,2014).  Uji  antibakteri  infusa lidah buaya terhadap bakteri Staphyloccocus aureus dan bakteri Escherichia coli tidak menunjukkan adanya penghambatan pertumbuhan inokulum, yang ditandainya dengan tidak adanya zona bening  yang  terbentuk.  Hal  ini  dapat disebabkan  oleh  banyaknya  faktor  yang berpengaruh  terhadap  zona  hambatan  yang dihasilkan  pada  metode  difusi  antara  lain kecepatan  difusi,  sifat  media  agar  yang digunakan, jumlah organisme yang diinokulasi,  kecepatan  tumbuh  bakteri, konsentrasi bahan kimia, serta kondisi pada saat  inkubasi  sehingga  diperlukan  adanya standarisasi  keadaan  untuk  memperoleh hasil  yang  dapat  dipercaya  (Anonim,2001 dlm Ariyanti NK dkk,2012).
Adanya  kelemahan  penggunaan  air sebagai  cairan  penyari  dalam  metode infundasi dapat menyebabkan zat aktif yang tertarik kemungkinan sebagian akan mengendap  kembali  apabila  kelarutannya sudah mendingin (lewat
jenuh), menyebabkan hilangnya zat – zat atsiri, dan adanya  zat  –  zat  yang  tidak  tahan  panas lama, disamping itu simplisia yang mengandung  zat  albumin  (protein),  zat  ini akan menggumpal dan menyulitkan penarikan zat – zat berkhasiat yang terdapat pada  simplisia.  Disamping  itu  adanya  air akan  mempercepat  proses  hidrolisa.  Untuk memekatkan  sari  air  dibutuhkan  waktu  dan bahan bakar lebih banyak biladibandingkan dengan etanol (Depkes RI,1979).
(a) (b)
Gambar 3. Diameter zona hambat kloramfenikol terhadap (a) bakteri Staphyloccocus aureus (b)
bakteri Escherichia coli
(a)                                         (b)                                             (c)
Gambar  4.  Hasil  zona  hambat  terhadap  bakteri Staphyloccocus  aureus (a)  infusa  daging  daun lidah buaya (b)infusa kulit daun lidah buaya (c) infusa daging&kulit daun lidah buaya
(a)                                            (b)                                         (c) Gambar  5.  Hasil  zona  hambat  terhadap  bakteri Escherichia  coli (a)  infusa  daging  daun  lidah buaya (b) infusa kulit daun lidah buaya (c) infusa daging&kulit daun lidah buaya

## KESIMPULAN
Aktivitas  antibakteri  lebih  banyak  terdapat pada  bagian  kulit  dan  daun  (daging  serta kulit  daun)  lidah  buaya.  Penurunan  atau pengurangan  jumlah  bakteri  (%  reduksi) terhadap  bakteri Escherichia  coli terdapat pada  infusa  kulit  daun  lidah  buaya  yaitu sebesar  28,2  %  setelah  kontak  atau tercampur  selama  60  detik  antara  infusa dengan  bakteri  uji Escherichia  coli .
Penurunan atau pengurangan jumlah bakteri (% reduksi) terhadap bakteri Staphyloccocus uareus terdapat pada infusa daun  (daging  &  kulit  daun)  lidah  buaya yaitu  sebesar  27,5  %  setelah  kontak  atau tercampur  selama  60  detik  antara  infusa dengan  bakteri  uji Staphyloccocus  aureus.
Uji  antibakteri  infusa  daun  lidah  buaya dengan metode difusi cakram tidak menunjukkan  adanya  zona  penghambatan di sekitar biakan bakteri uji.

## DAFTAR PUSTAKA
AOAC  International  Official  Methods  of Analysis.  2000. Germicidal  and
Detergent  Sanitizing  Action  of Desinfectants. AOAC Official Method 960.09.Chapter 6.p.10. Amelia Lisa. 2014. Uji Aktivitas Antibakteri  Ekstrak  Kulit  Manggis ( Garcinia mangostana L ) Terhadap Staphylococcus  aureus Dan Pseudomonas auruginosa (Skripsi  S1).Fakultas  Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam. Universitas Nusa Bangsa. Bogor. Ariyanti,NK.  I.B.G  Darmayasa  dan  S.K Sudirga,  2012.Daya  Hambat  Kulit Daun Lidah Buaya ( Aloe barbadensis Miller) Terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus aureus ATCC 25923  Dan Eschericia  coli ATCC 25922.  Jurusan  Biologi.  Fakultas Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan
Alam.  Universitas  Udayana.  Bukit Jimbaran.
Adha  PW.  2009.  Potensi  Lidah  Buaya
Pontianak  ( Aloe  Chinensis  Lin ) Sebagai Bahan Baku Industri Berbasis  Sumber  Daya  Lokal. Program Teknologi Industri Pertanian  Pasca  Sarjana  Teknologi Pertanian  .  Universitas  Brawijaya. Malang BSNI.2008. Metode  Uji (Screening  Test) Residu  Antibiotik  Pada  Daging, Telur Dan Susu Secara Bioassay .SNI 7424.Badan Standarisasi Nasional. Jakarta. Dahlan  MA  dan  Arief  Fuad,  1990, Penuntun  Praktikum  Mikrobiologi , Departemen Perindustrian, Akademi Analis Kimia, Bogor. Departemen Kesehatan RI. 1979. Farmakope Indonesia . Edisi III. Jakarta.
David W. 2000. Superfoods, The Food and Medicine of the Future . North Atlantic Books. Berkeley.
California.
Febram B.P dan Vetnizah J, 2005, Aktivitas Sediaan  Gel  Dari  Ekstrak  Lidah
Buaya  ( Aloe  Baebadensis Miller) Untuk  Proses  Persembuhan  Luka Pada Hewan, LPPM,IPB,Bogor.
Iriano,  A.  2008.  Efek  Antibakteri  Infusum Aloe vera terhadap Porphyromonas gingivalis In  Vitro  (perbandingan
Metode  Ekstraksi  Maserasi  dan Infundasi)  (Skripsi  S-1),  Fakultas Kedokteran  Gigi  Program  Studi Pendidikan Dokter Gigi, Universitas Indonesia. Jakarta. Ika  Lestari  S.  2011.  Potensi  Antijamur Ekstrak Daun Sirih Merah dan Sirih Hijau Terhadap Pertumbuhan Jamur Candida  albicans .  Fakultas
Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan Alam.  Universitas  Nusa  Bangsa. Bogor
Jamal  A.  2015. Intensif  Budidaya  Lidah
Buaya  Usaha  Dengan  Prospek yang  Kian  Berjaya .  Cetakan  1. Pustaka Baru press. Yogyakarta.
Jawetz,  E,  G.E.  Melnick,  C.A.  Adelberg. 1986. Mikrobiologi (Untuk  Profesi Kesehatan). Edisi 16. Diterjemahkan  oleh  Tonang.  EGC Penerbit Buku Kedokteran. Jakarta. Jawetz,  E.,  J.L.  Melnick.,  Adelberg.,  G.F. Brooks., J.S. Butel., dan L.N.Ornston.  1996. Mikrobiologi Kedokteran .  Edisi  ke-20  (Alih bahasa  :Nugroho&  R.F.Maulany). Penerbit  Buku  Kedokteran  EGC. Jakarta.
Melki,  W.A.,  E.P.  Kurniati.  2011.  Uji
Antibakteri  Ekstrak  Gracilaria  Sp
(Rumput  Laut)  Terhadap  Bakteri
E.coli dan S.aureus ,  Program  Studi Ilmu Kelautan Fakultas Matematika dan Ilmu Pengethuan Alam. Universitas Indralaya. Indonesia.
Pelczar  J.,  Jr.  Michael,  E.C.S.Chan,  1986. Dasar-Dasar  Mikrobiologi .Edisi  1. Penerjemah Ratna Siri Hadioetomo, dkk. Penerbit Universitas Indonesia (UI-Press). Jakarta.
Pelczar,  M.  dan  Chan.  1988. Dasar-Dasar Mikrobiologi (Jilid  1).  UI  Press.
Jakarta. Rachman,  I.S.  2011.  Uji  Aktivitas  Ekstrak Biji Pepaya Terhadap Staphyloccocus  aureus ,  Akademi Farmasi Putra Malang, Indonesia.