* Penulis untuk korespondensi. e-mail: dy_tetelepta4christ@yahoo.com
Pemacuan Pertumbuhan Melon ( Cucumis melo L.) dengan Cendawan Mikoriza Arbuskula dan Bakteri Azospirillum sp.

## Promoting Growth of Cucumis melo L. by Arbuscular
Mycorrhizal Fungi and Azospirillum sp. Bacteria
Lady Diana Tetelepta 1* , Triadiati 2 , dan Nampiah Sukarno 2
1 Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Pattimura Jl. Ir. M. Putuhena, Kampus Poka, Ambon 97223, Indonesia
2 Departemen Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Institut Pertanian Bogor (Bogor Agricultural University), Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680, Indonesia
Diterima 9 Oktober 2015/Disetujui 11 Mei 2016

## ABSTRACT
Melon (Cucumis melo L.) is a high economic value horticultural crop that is cultivated in some regions of Indonesia under fertilization management. Application of inorganic fertilizer continuously can reduce soil microbial abundance. One of the soil microbial that promote plant growth is arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) and Azospirillum sp. The aim of this study was to analysed the effect of AMF and Azospirillum sp. in promoting growth and production of melon. The experiment was carried out in a greenhouse and was arranged in a completely randomized design with five replicates. Five treatments tested were: control, fertilized with NPK, inoculated with AMF, inoculated with Azospirillum sp., inoculated with AMF + Azospirillum sp. The results showed that the effect of AMF on root growth and shoot growth were similar to NPK fertilizer. Azospirillum sp. increased root growth. On the other side, the effect of Azospirillum sp. on shoot growth was similar to NPK fertilizer. However, AMF and Azospirillum sp. inoculation solely increased plant height, fruit weight, fruit diameter, flavor and length of fruit storage. Meanwhile, combination of AMF and Azospirillum sp. increased plant height, root growth, shoot growth, fruit weight, fruit diameter, flavor and length of fruit storage. This study revealed that application of AMF and Azospirillum sp. in melon cultivation was more effective and efficient than NPK fertilizer.
Keywords: arbuscular mycorrhizal fungi, Azospirillum sp., Cucumis melo L.

## ABSTRAK
Melon (Cucumis melo L.) merupakan tanaman holtikultura yang memiliki nilai ekonomi dan dibudidayakan di beberapa daerah di Indonesia dengan manajemen pemupukan. Pemanfaatan pupuk anorganik secara terus menerus akan menurunkan kelimpahan mikroba tanah. Salah satu mikroba tanah yang dapat memacu pertumbuhan tanaman ialah cendawan mikoriza arbuskula (CMA) dan Azospirillum sp. Penelitian ini bertujuan untuk menguji peranan CMA dan Azospirillum sp. dalam meningkatkan pertumbuhan dan produksi tanaman melon. Penelitian ini dilakukan di rumah kaca dengan menggunakan rancangan acak lengkap dengan lima ulangan. Lima perlakuan yang diujikan yaitu kontrol, pemupukan NPK, inokulasi dengan  CMA,  inokulasi  dengan  Azospirillum  sp.,  dan  inokulasi  dengan  CMA  +  Azospirillum  sp.  Hasil  menunjukkan bahwa efek CMA terhadap pertumbuhan akar dan tajuk tanaman melon sama dengan pemupukan NPK. Azospirillum sp. meningkatkan pertumbuhan akar tanaman melon, sedangkan efeknya terhadap pertumbuhan tajuk tanaman sama dengan pemupukan NPK. Meskipun demikian, baik CMA maupun Azospirillum sp. mampu meningkatkan tinggi tanaman, bobot buah, diameter buah, aroma, dan umur simpan buah melon pada suhu ruang. Penggunaan CMA dan Azospirillum sp. secara bersamaan dapat meningkatkan pertumbuhan akar dan tajuk serta meningkatkan bobot buah, diameter buah, aroma, dan umur simpan buah melon pada suhu ruang. Dengan demikian, aplikasi CMA dan Azospirillum sp. dalam budidaya tanaman melon akan lebih efektif dan efisien dibandingkan dengan pemupukan NPK.
Kata kunci: Azospirillum sp., cendawan mikoriza arbuskula, Cucumis melo L.

## PENDAHULUAN
Melon ( Cucumis melo L.) merupakan tanaman buah semusim  yang  memiliki  potensi  ekonomi  yang  tinggi, sehingga melon banyak dibudidayakan di Indonesia. Seperti halnya  budidaya  tanaman  lain,  pemupukan  merupakan salah  satu  faktor  yang  penting  dalam  budidaya  melon. Pemupukan  yang  dilakukan  meliputi  pupuk  dasar  yang diberikan pada awal penanaman dan pupuk susulan. Pupuk dasar yang umum diberikan dalam budidaya melon adalah pupuk  organik  berupa  kompos  dan  pupuk  kandang  serta pupuk anorganik berupa pupuk NPK. Pupuk susulan yang umum diberikan adalah pupuk NPK dan KNO 3 (Ayoola dan Makinde, 2007; Budiastuti et al ., 2012). Pemakaian  pupuk  anorganik  secara  terus  menerus dapat  menurunkan  keberadaan  mikroba  tanah.  Sementara di  alam,  lebih  dari  80%  tanaman  diketahui  membentuk simbiosis  dengan  cendawan  mikoriza  arbuskula  (CMA). Pemanfaatan  CMA  dapat  meningkatkan  pertumbuhan tanaman  serta  membantu  tanaman  dalam  penyerapan berbagai  hara  terutama  hara  P  pada  kondisi  P  rendah, meningkatkan  ketahanan  tanaman  terhadap  penyakit  dan cekaman, seperti kekeringan dan salinitas (Porras-Soriano et  al. ,  2009;  Ruíz-Sánchez et  al .,  2011).  Inokulasi  CMA pada  tanaman turfgrass dapat  meningkatkan  kandungan N tajuk, serapan N tajuk dan efisiensi pemupukan N serta meningkatkan kepadatan tajuk (Guntoro et al ., 2006). Selain itu, CMA diketahui dapat meningkatkan pertumbuhan dan produksi beberapa tanaman budidaya, seperti cabai, tomat, dan terung (Ortas, 2012).
Melon  merupakan  salah  satu  spesies  tanaman  yang juga membentuk simbiosis dengan CMA (Srivastava et al. , 2012). CMA membantu tanaman melon dalam penyerapan berbagai unsur hara (Sensoy et al ., 2013) dan meningkatkan pertumbuhan tanaman melon dengan meningkatkan tinggi tanaman,  panjang  akar,  bobot  basah,  dan  bobot  kering tanaman (Huang et al ., 2011). Selain  membantu  penyerapan hara    dan    meningkatkan    pertumbuhan    tanaman,  CMA juga membantu tanaman melon dalam mereduksi cendawan patogen, seperti Fusarium (Martínez-Medina et al ., 2011b). Selain CMA, mikroba tanah yang diketahui berperan dalam  pertumbuhan  tanaman,  yaitu Azospirillum sp. Bakteri ini berperan sebagai  penambat nitrogen dan juga menghasilkan hormon  pertumbuhan IAA ( indole-3-acetic acid ), sehingga meningkatkan pertumbuhan tanaman dengan meningkatkan panjang akar, jumlah akar lateral, bobot basah tajuk, dan bobot kering tajuk (Barassi et al ., 2007). Dalam interaksi  dengan  CMA, Azospirillum merupakan  salah satu  spesies  yang  termasuk  dalam  kelompok mycorrhiza helper bacteria (MHB) karena dapat memacu aktivitas dan perkembangan CMA (Miransari, 2011).
Inokulasi  CMA  dan Azospirillum secara  bersamaan menghasilkan  pertumbuhan  tanaman  yang  lebih  tinggi dibandingkan  dengan  inokulasi  tunggal  CMA  maupun inokulasi  tunggal Azospirillum .  Inokulasi  CMA  dan Azospirillum secara bersamaan pada tanaman tomat dapat menghasilkan tanaman tertinggi dan bobot kering tanaman yang  lebih  besar  dibandingkan  dengan  inokulasi  tunggal
CMA maupun inokulasi tunggal Azospirillum (Guru et al ., 2011). Penelitian-penelitian  tentang  melon  yang  selama  ini dilakukan  baru  meliputi  interaksi  melon  dengan  CMA, sedangkan interaksi melon dengan Azospirillum sp. belum banyak dilakukan. Oleh karena itu, penelitian ini bertujuan untuk  menguji  peranan  CMA  dan Azospirillum sp.  dalam meningkatkan pertumbuhan tanaman melon.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  April  2012 sampai  Juli  2013  di  Laboratorium  Fisiologi  Tumbuhan, Laboratorium  Mikologi,  Laboratorium  Mikrobiologi, Laboratorium  Terpadu,  rumah  kaca  Departemen  Biologi Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam IPB, serta di Laboratorium Bioteknologi Kehutanan PPSHB IPB.

## Rancangan Percobaan dan Perlakuan
Percobaan  disusun  dalam  rancangan  acak  lengkap dengan  5  perlakuan,  yaitu  kontrol  (tanpa  pemupukan), pemupukan NPK, inokulasi dengan CMA, inokulasi dengan Azospirillum sp., dan inokulasi dengan CMA + Azospirillum sp. Setiap perlakuan diulang 5 kali.
Data  dianalisis  menggunakan analysis  of  variance (ANOVA) dan uji lanjut beda nilai terkecil (BNT) pada taraf 5%, sedangkan data hasil organoleptik dianalisis dengan uji Kruskal Wallis dan uji lanjut Dunn pada taraf 5%.

## Penyiapan Media Tanam
Tanah  yang  digunakan  sebagai  media  tanam  adalah tanah liat berlempung yang diambil dari daerah Dramaga, Bogor  yang  mengandung  46  ppm  P 2 O 5 (Olsen),  3.26% karbon,  0.29%  nitrogen  dengan  rasio  C/N  11  dan  pH  5.2 (H 2 O).  Sebelum  digunakan,  tanah  dikering  anginkan kemudian  diayak.  Setelah  itu,  tanah  disterilisasi  dengan metode steam pada suhu 100 0 C selama 9 jam.

## Penyiapan Benih Melon
Benih melon yang digunakan ini adalah benih melon hibrida (Ivory, PT. Agri Makmur Pertiwi-Surabaya). Benih melon  disterilisasi  dengan  alkohol  70%  selama  5  menit, kemudian  dibilas  dengan  aquades  sebanyak  4  kali  dan diperam di dalam cawan petri yang dilapisi dengan kertas saring  lembab  selama  20  jam.  Setelah  itu,  benih  melon ditanam pada media tanam (Huang et al ., 2011).
Penyiapan Inokulum CMA dan Azospirillum sp.
Inokulum  CMA  ( Glomus sp.  dan Gigaspora sp.) merupakan hasil produksi sendiri yang diperbanyak dengan menggunakan  metode  biakan  pot.  Tanaman  inang  yang digunakan  untuk  perbanyakan  inokulum  CMA  adalah sorghum  pada  media  tanam  zeolit.  Persentase  kolonisasi diamati  setelah  6  bulan  pemeliharaan.  Jika  kolonisasi

## J. Agron. Indonesia 44 (2) : 197 - 203 (2016)
mencapai 70%, maka dapat dipakai sebagai inokulum untuk perlakuan. Sebanyak 1 kg inokulum CMA yang mengandung 1.4 spora g -1 ditambahkan untuk setiap pot perlakuan CMA. Isolat Azospirillum sp. strain IDM-3 ditumbuhkan dalam 1 L media nitrogen free bromthymol (NFB) dan diinkubasi selama  48  jam  (Cáceres,  1982),  kemudian  disentrifugasi pada 4500 rpm selama 5 menit (Ruíz-Sánchez et al. , 2011). Selanjutnya, 50 mL endapan hasil sentrifugasi ini dicampur ke dalam 1 kg gambut yang telah disterilkan. Sebanyak 2 g inokulum Azospirillum sp. yang mengandung kepadatan sel sebanyak 2.2 x 10 7 cfu g -1 gambut ditambahkan ke dalam setiap pot perlakuan Azospirillum sp.

## Penanaman
Bibit  melon  ditanam  di  dalam  pot  yang  berisi  10 kg  media  tanam.  Media  tanam  untuk  kontrol  berupa  10 kg tanah. Media tanam perlakuan NPK terdiri atas tanah, pupuk kandang, kompos dan sekam padi (1:1:1:3). Media tanam perlakuan CMA terdiri atas tanah dengan inokulum CMA 10% (b/b). Untuk perlakuan Azospirillum sp., media tanamnya  berupa  tanah  dan  2  g  inokulum Azospirillum sp.  Selanjutnya,  media  tanam  untuk  perlakuan  CMA  + Azospirillum sp., terdiri atas tanah, 10% inokulum CMA (b/ b) dan 2 g inokulum Azospirillum sp. Penyiraman dilakukan setiap hari dengan menggunakan aquades. Pemupukan hanya diberikan untuk perlakuan NPK berupa  5  g  NPK  16:16:16  per  pot  pada  awal  penanaman dan pupuk susulan yang diberikan setiap 10 hari hingga 2 minggu sebelum panen.

## Analisis Pertumbuhan Tanaman
Tinggi  tanaman  diukur  setiap  minggu.  Bobot  basah dan bobot kering tanaman diukur pada umur 25 hari setelah tanam  (HST). Biomassa  tanaman dikeringkan pada suhu 70 o C selama 3 hari. Luas daun total diukur dengan leaf area meter.
Analisis Kandungan Nitrogen, Fosfor, dan Karbon Daun
Kadar nitrogen, fosfor, dan karbon daun melon diukur pada  umur  25  HST.  Kandungan  nitrogen  daun  diukur dengan  metode  Kjeldhal.  Kandungan  fosfor  daun  diukur dengan metode spektrofotometer. Kandungan karbon daun diukur dengan metode Walkley & Black.

## Analisis Kualitas Buah Melon
Kualitas  buah  melon  yang  meliputi  bobot  buah, diameter buah, tingkat kemanisan buah, aroma, tekstur, dan umur simpan buah pada suhu ruang diukur pada saat panen (81-87 HST). Tingkat kemanisan buah melon diukur dengan brix  refractometer .  Aroma  and  tekstur  buah  ditentukan secara organoleptik dengan melibatkan 10 orang panelis.

## Analisis Kolonisasi Mikoriza
Analisis  kolonisasi  mikoriza  dilakukan  pada  akar tanaman melon umur 25 HST dan saat panen. Struktur infeksi cendawan  diamati  dengan  pewarnaan  akar  menggunakan pewarna  biru  trypan  (Phillips  dan  Hayman,  1970). Pertumbuhan cendawan dan persentase kolonisasi di dalam akar  diamati  di  bawah  mikroskop  dengan  menggunakan metode slide (Giovannetti dan Mosse, 1980).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil  menunjukkan  bahwa  baik  CMA  maupun Azospirillum sp. dapat meningkatkan tinggi tanaman melon. Perbedaan tinggi tanaman melon terlihat pada umur 21 HST. Rata-rata tinggi tanaman melon umur 21 HST pada kontrol, perlakuan  NPK,  perlakuan  CMA,  perlakuan Azospirillum sp., dan perlakuan CMA + Azospirillum sp. berturut-turut adalah  40.40  cm;  45.40  cm;  49  cm;  54  cm  dan  54  cm (Gambar  1).  Selanjutnya,  rata-rata  tinggi  tanaman  melon umur  25  HST  pada  kontrol,  perlakuan  NPK,  perlakuan CMA, perlakuan Azospirillum sp., dan perlakuan CMA + Azospirillum sp.  berturut-turut adalah 77.28 cm; 88.4 cm; 96.06 cm; 98.18 cm dan 98.58 cm (Gambar 1).
CMA  dan Azospirillum sp.  menghasilkan  laju pertumbuhan  vegetatif  yang  berbeda  saat  diinokulasikan secara terpisah. Pengaruh CMA terhadap jumlah daun, luas daun total, diameter batang, bobot basah dan bobot kering tajuk, panjang akar dan jumlah akar lateral setara dengan pemupukan  NPK  (Tabel  1). Azospirillum sp.  berperan dalam meningkatkan pertumbuhan akar melon, sedangkan pengaruh Azospirillum sp.  terhadap  jumlah  daun,  luas daun total, diameter batang, bobot basah dan bobot kering tajuk  setara  dengan  pemupukan  NPK  (Tabel  1).  Peranan Azospirillum sp.  dalam  meningkatkan  pertumbuhan  akar disebabkan  oleh  bakteri  ini  menghasilkan  IAA  ( indole-3- acetic acid ) yang merupakan salah satu hormon pertumbuhan tanaman (Akbari et al ., 2007). Hormon ini berperan dalam pembelahan  sel,  perpanjangan  batang  tanaman  serta meningkatkan jumlah bulu akar dan akar lateral (Srivastava, 2002; Aloni et al ., 2006; Taiz dan Zeiger, 2006). Sebaliknya,  inokulasi  CMA  dan Azospirillum sp. secara  bersamaan  mampu  meningkatkan  pertumbuhan
0 50 100 150 7 14 21 25 Ti ng gi ta na man (c m) Umur tanaman (HST)
Gambar  1. Tinggi tanaman melon kontrol (◊), perlakuan NPK  (∆), CMA (□), Azospirillum sp.  strain IDM-3  (○), CMA + Azospirillum sp. strain IDM-3 (▲)
akar melon serta meningkatkan pertumbuhan tajuk melon (Tabel  1).  Hal  ini  menunjukkan  adanya  hubungan  saling mempengaruhi antara CMA dan Azospirillum sp. Inokulasi CMA  dan Azospirillum sp.  secara  bersamaan  diketahui memberikan pertumbuhan tanaman tomat yang lebih tinggi dibandingkan saat diinokulasikan secara terpisah (Guru et al .,  2011).  Hubungan  saling  mempengaruhi  antara  CMA dan Azospirillum sp.  juga  dapat  dilihat  pada  kolonisasi CMA dari akar melon saat dinokulasikan dengan CMA + Azospirillum sp. dibandingkan dengan kolonisasi CMA dari akar melon yang hanya diinokulasikan dengan CMA.
Azospirillum sp. meningkatkan kolonisasi CMA pada akar  melon,  sehingga  menyebabkan  perlakuan  CMA  + Azospirillum sp. memiliki kolonisasi CMA yang lebih tinggi dibandingkan dengan perlakuan CMA, baik pada umur 25 HST  maupun  pada  umur  panen  (81-87  HST)  (Tabel  2). Hal ini diduga karena kemampuan Azospirillum sp. dalam meningkatkan jumlah bulu-bulu akar dan akar lateral yang memicu peningkatan kolonisasi CMA pada akar (Miransari, 2011).
Selain  menghasilkan  IAA  yang  dapat  meningkatkan pertumbuhan  akar  tanaman  melon, Azospirillum sp.  juga merupakan  bakteri  penambat  nitrogen  (Lin et  al .,  2015), sedangkan  CMA  menyediakan  fosfor  yang  dibutuhkan oleh  tanaman  melon  melalui  infeksi  dan  kolonisasinya pada  akar  tanaman.  CMA  memperluas  eksplorasi  hifa eksternal  di  dalam  tanah  dengan  memperpendek  jarak
difusi hara ke akar dan meningkatkan luas permukaan akar untuk penyerapan (Smith dan Read, 1997). Hal inilah yang menyebabkan, baik CMA maupun Azospirillum sp. mampu meningkatkan serapan hara pada tanaman melon, sehingga tanaman  melon  perlakuan  CMA  maupun  tanaman  melon perlakuan Azospirillum sp.  memiliki  kandungan  nitrogen, fosfor,  dan  karbon  daun  yang  setara  dengan  kandungan nitrogen, fosfor, dan karbon daun tanaman melon perlakuan pupuk NPK (Tabel 3).
Nitrogen  dibutuhkan  untuk  sintesis  asam  nukleat, nukleotida,  protein  (termasuk  berbagai  enzim)  dan klorofil,  serta  komponen  dari  senyawa  NADPH.  Fosfor juga  dibutuhkan  untuk  sintesis  asam  nukleat,  nukleotida, serta  merupakan  komponen  fosfolipid  pada  membran  sel, komponen  senyawa  ADP  dan  ATP.  Dengan  demikian, nitrogen dan fosfor merupakan hara makro yang berperan dalam proses pembelahan sel dan proses fotosintesis yang menentukan  pertumbuhan  dan  perkembangan  tanaman. Selain  itu,  kekurangan  nitrogen  dan  kekurangan  fosfor juga  merupakan  faktor  pembatas  bagi  ukuran  buah (Barker  dan  Pilbeam,  2007).  Ukuran  buah  dan  kualitas buah  sangat  ditentukan  oleh  tahapan  pembelahan  sel  dan tahapan  pembesaran  sel  dalam  proses  pertumbuhan  dan perkembangan buah. Selama tahapan ini, buah merupakan sink yang kuat dengan mengimpor sejumlah besar fotosintat (Srivastava,  2002).  Nitrogen  dan  fosfor  juga  berperan dalam fotosintesis yang menghasilkan fotosintat yang akan ditranspor ke buah selama tahapan pembesaran sel. Hal inilah yang  menyebabkan  tanaman  melon  kontrol  menghasilkan buah  berukuran  yang  lebih  kecil  dengan  kemanisan  yang lebih rendah dan tekstur yang kurang renyah dibandingkan dengan  buah  tanaman  melon  perlakuan  NPK,  perlakuan CMA, dan perlakuan Azospirillum sp. (Tabel 4).
Meskipun buah melon yang dihasilkan oleh perlakuan CMA dan perlakuan Azospirillum sp. memiliki tekstur dan tingkat  kemanisan  yang  tidak  berbeda  dengan  buah  yang dihasilkan oleh perlakuan NPK, bobot buah dan diameter buah  melon  yang  dihasilkan  oleh  perlakuan  CMA  dan perlakuan Azospirillum sp.  lebih  besar  dari  buah  melon yang  dihasilkan  oleh  perlakuan  NPK  (Tabel  4).  Jumlah sel  yang  terbentuk  pada  tahapan  pembelahan  sel  sebelum memasuki tahapan pertumbuhan atau pembesaran sel akan
Perlakuan PA terpanjang (cm) Jumlah akar lateral BB akar (mg) BK akar (mg) Jumlah daun LD total (cm 2 ) Diameter batang (mm) BB tajuk (g) BK tajuk (g) Kontrol 27.00c 7.40b 174c 77c 11.60b 603.72c 4.32c 29.84c 2.14c NPK 32.50b 7.60b 196b 96b 11.80b 810.85b 4.86b 37.52b 2.85b CMA 34.00b 7.80b 207b 102b 12.40b 844.26b 5.04b 42.40ab 3.13b Azospirillum sp. 39.20a 10.80a 226a 124a 12.80b 852.35b 4.94b 42.96ab 3.13b CMA + Azospirillum sp. 39.50a 11.00a 230a 128a 14.40a 911.47a 5.94a 49.26a 3.63a

## Tabel 1. Pertumbuhan vegetatif tanaman melon pada 25 HST
Keterangan: Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom  yang  sama  menunjukkan  hasil  yang  tidak  berbeda  nyata  berdasarkan uji BNT pada α = 5%. PA = panjang akar; BB = bobot basah; BK = bobot kering; LD = luas daun
Perlakuan Kolonisasi 25 HST (%) Kolonisasi saat panen (%) Kontrol 0.00c 0.00c NPK 0.00c 0.00c CMA 31.97b 81.29b Azospirillum sp. 0.00c 0.00c CMA + Azospirillum sp. 49.56a 94.60a Tabel 2. Kolonisasi CMA pada akar tanaman melon
Keterangan:  Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom yang  sama  menunjukkan  hasil  yang  tidak  berbeda nyata berdasarkan uji BNT pada α = 5%
sangat  menentukan  ukuran  buah.  Auksin,  sitokinin,  dan giberelin merupakan hormon-hormon yang sangat berperan dalam  tahapan  ini  karena  dapat  memacu  pembelahan  sel. Bahkan, sitokinin dapat meningkatkan aktivitas pembelahan sel menjadi maksimal, sehingga menghasilkan buah dengan ukuran  yang  lebih  besar  (Srivastava,  2002).  Kemampuan CMA  dan Azospirillum sp.  untuk  menghasilkan  atau menginduksi dan meningkatkan produksi auksin, giberelin, dan  sitokinin  (Foo et  al. ,  2013;  Kanchana et  al. ,  2013) diduga yang menyebabkan CMA dan Azospirillum sp. dapat menghasilkan buah melon dengan bobot dan diameter yang lebih besar dari buah melon yang dihasilkan oleh perlakuan NPK sekalipun CMA dan Azospirillum sp. memiliki serapan hara yang sama dengan perlakuan NPK.
Buah melon memiliki aroma khas karena mengandung berbagai senyawa volatile (Beaulieu, 2006). Inokulasi CMA pada  tanaman  strawberry  diketahui  dapat  meningkatkan aroma  buah  strawberry  (Fan et  al .,  2008).  Kemampuan CMA  untuk  meningkatkan  aroma  buah,  diduga  karena tambahan  senyawa  volatil  lain,  yaitu cyclohexenone yang menyebabkan  aroma  pada  buah  dan  bunga.  Senyawa  ini dihasilkan saat tanaman membentuk senyawa strigolactone yang  merupakan  signal  untuk  bersimbiosis  dengan  CMA (Walter et al ., 2010). Hal inilah yang diduga menyebabkan CMA  mampu  menghasilkan  buah  melon  dengan  aroma yang lebih harum (Tabel 4).
Buah  melon  merupakan  buah  klimaterik,  sehingga memiliki umur simpan yang terbatas. Setelah umur simpan ini dilewati, buah melon akan mengalami serangkaian perubahan fisiologi dan biokimia, antara lain perubahan warna buah, tekstur,  aroma  dan  rasa  (Ezura  dan  Owino,  2008).  CMA diketahui mampu menurunkan ACC ( aminocyclopropane- 1-carboxylate ) yang merupakan prekusor etilen (Martínez- Medina et al. , 2011a), sedangkan Azospirillum sp. diketahui mengandung ACC deaminase yang dapat mengubah ACC menjadi amonia (Glick et al ., 1998), sehingga diduga bahwa CMA  dan Azospirillum sp.  dapat  menurunkan  produksi hormon  etilen  yang  menyebabkan  lebih  lamanya  umur simpan buah melon pada suhu ruang dibandingkan dengan umur simpan buah melon yang dihasilkan oleh pemupukan NPK (Tabel 4).
Cendawan  mikoriza  arbuskula  dan Azospirillum sp. dapat  membantu  untuk  memenuhi  kebutuhan  hara  pada tanaman  melon  dan  meningkatkan  pertumbuhan  tanaman melon, sehingga jika dimanfaatkan sebagai pupuk hayati di dalam budidaya tanaman melon akan lebih efisien dan efektif dibandingkan  dengan  pemupukan  yang  umum  dilakukan karena  hanya  diberikan  satu  kali  pada  awal  penanaman, sedangkan yang umum dilakukan adalah pemupukan dasar saat awal penanaman dan beberapa kali pupuk susulan setiap 10 hari sekali sampai 2-3 minggu jelang panen.
Perlakuan Kandungan N daun (g) Kandungan P daun (g) Kandungan C daun (g) Kontrol 0.12c 0.02c 0.79c NPK 0.20b 0.03b 1.33b CMA 0.22ab 0.03b 1.41b Azospirillum sp. 0.22ab 0.03b 1.37b CMA + Azospirillum sp. 0.25a
0.04a
1.68a
Tabel 3. Kandungan nitrogen, fosfor dan karbon daun melon pada 25 HST
Keterangan: Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  kolom  yang  sama  menunjukkan  hasil  yang  tidak  berbeda  nyata  berdasarkan uji BNT pada α = 5%
Perlakuan Bobot buah (g)* Diameter buah (cm)* Kemanisan buah (derajat briks)* Aroma** Tekstur** Umur simpan pada suhu ruang (hari)* Kontrol 285.40c 9.16c 12.20b 10.50b (harum) 5.50b (kurang renyah) 4.00c NPK 353.80b 9.64b 14.40a 10.50b (harum) 35.50a (renyah) 6.60b CMA 420.10a 10.04a 14.20a 40.50a (sangat harum) 35.50a (renyah) 9.40a Azospirillum sp. 432.20a 10.02a 14.00a 10.50b (harum) 35.50a (renyah) 9.40a CMA + Azospirillum sp. 470.20a 10.18a 14.20a 40.50a (sangat harum) 35.50a (renyah) 9.40a

## Tabel 4. Kualitas buah melon yang dipanen pada 81-87 HST
Keterangan: * = angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata berdasarkan uji BNT pada α = 5%; **= angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata berdasarkan uji Dunn pada α = 5%

## J. Agron. Indonesia 44 (2) : 197 - 203 (2016)

## KESIMPULAN
Inokulasi CMA dan Azospirillum sp. secara bersamaan dapat  meningkatkan  penyerapan  hara  dan  pertumbuhan tanaman melon, antara lain: tinggi tanaman, panjang akar, jumlah  akar  lateral,  bobot  basah  dan  bobot  kering  akar, jumlah daun, luas daun total, diameter batang, bobot basah dan bobot kering tajuk, sedangkan inokulasi Azospirillum sp. dapat meningkatkan pertumbuhan akar tanaman melon. Baik CMA, Azospirillum sp. maupun inokulasi CMA dan Azospirillum sp.  secara  bersamaan  dapat  meningkatkan bobot buah, diameter buah, aroma dan umur simpan buah melon  pada  suhu  ruang,  sehingga  pemanfaatan CMA  dan Azospirillum sp.  sebagai  pupuk  hayati  dalam  budidaya tanaman melon akan lebih efektif dan efisien dibandingkan dengan pemupukan secara konvensional.

## DAFTAR PUSTAKA
Akbari,  G.A.,  S.M.  Arab,  H.A.  Alikhani,  I.  Allahdadi, M.H.  Arzanesh.  2007.  Isolation  and  selection  of indigeneous Azospirillum spp.  and  the  IAA  of superior strains effect on wheat roots. World J. Agric. Sci . 3:523-529.
Aloni,  R.,  E.  Aloni,  M.  Langhans,  C.I.  Ullrich.  2006. Role  of  cytokinin  and  auxin  in  shaping  root architecture:  regulating  vascular  differentiation, lateral root initiation, root apical dominance and root gravitropisme. Ann. Bot. 97:883-893.
Ayoola, O.T., E.A. Makinde. 2007. Complementary organic and  inorganic  fertilizer  application:  influence  on growth and yield of cassava/maize/melon intercrop with  a  relayed  cowpea.  Aust.  J.  Basic  Appl.  Sci. 1:187-192.
Barassi, C.A., R.J. Sueldo, C.M. Creus, L.E. Carrozzi, E.M. Casanovas, M.A. Pereyra. 2007. Azospirillum spp., a dynamic soil bacterium favourable to vegetables crop production. Dynamic Soil, Dynamic Plant 1:68-82.
Barker,  A.V.,  D.J.  Pilbeam.  2007.  Handbook  of  Plant Nutrition. CRC Press, Publ. New York, USA.
Beaulieu, J.C. 2006. Volatile changes in cantaloupe during growth, maturation, and in stored fresh-cuts prepared from fruit harvested at various maturities. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 131:189-207.
Budiastuti,  S.,  D.  Purnomo,  T.D.  Sulistyo,  S.P.  Rahardjo,
L. Darsono, Y.V. Pardjo. 2012. The enhancement of melon fruit quality by application of the fertilizer and gibberellin. J. Agric. Sci. Tech. 2:455-460.
Cáceres,  E.A.R.  1982.  Improved  medium  for  isolation  of Azospirillum spp. Appl. Environ. Microbiol. 44:990-
991.
Ezura, H., W.O. Owino. 2008. Melon, an alternative model plant for elucidating fruit ripening. Plant Sci.175:121- 129.
Fan, Y., Y. Luan, L. An, K. Yu. 2008. Arbuscular mycorrhizae formed  by Penicillium  pinophilum improve  the growth,  nutrient  uptake  and  photosynthesis  of strawberry  with  two  inoculum-types.  Biotechnol. Lett. 30:1489-1494.
Foo,  E.,  J.J.  Ross,  W.T.  Jones,  J.B.  Reid.  2013.  Plant hormones  in  arbuscular  mycorrhizal  symbioses:  a emerging  role  for  gibberellins. Ann.  Bot.  111:769- 779.
Giovannetti, M., B. Mosse. 1980. An evaluation of techniques for  measuring  vesicular  arbuscular  mycorrhizal infection in roots. New Phytol . 84:489-500.
Glick,  B.R.,  D.M.  Penrose,  J.  Li.  1998. A  model  for  the lowering  of  plant  ethylene  concentration  by  plant growth-promoting bacteria. J.  Theor. Biol . 190:63- 68.
Guntoro, D., M.A. Chozin, B. Tjahjono, I. Mansur. 2006. Pemanfaatan  cendawan  mikoriza  arbuskula  dan bakteri Azospirillum sp. untuk meningkatkan efisiensi pemupukan pada turfgrass. Bul. Agron. 34:62-70.
Guru, V., P. Tholkappian, K. Viswanathan. 2011. Influence of arbuscular mycorrhizal fungi and Azospirillum co- inoculation on the growth characteristics, nutritional content  and  yield  of  tomato  crops  grown  in  South India. Indian J. Fund. Appl. Life Sci.1:84-92.
Huang,  Z.,  Z.  Zou,  C.  He,  Z.  He,  Z.  Zhang,  J.  Li.  2011. Physiological and photosynthetic response of melon ( Cucumis melo L.) seedling to three Glomus species under water deficit. Plant Soil 339:391-399.
Kanchana,  D.,  M.  Jayanthi,  D.  Kanchana,  P.  Saranraj,  D. Sujitha. 2013. Evaluation of plant growth promoting substance  production  by Azospirillum sp.  isolated from  rhizosphere  of  chilli  ( Capsicum  annuum L.). Int. J. Microbiol. Res. 4:300-304.
Lin,  S., A.  Hameed, Y.  Liu, Y.  Hsu,  W.  Lai,  F.  Shen,  C. Young. 2015. Azospirillum soli sp. nov., a nitrogen- fixing species isolated from agricultural soil. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 65:4601-4607.
Martínez-Medina, A., A. Roldán, A. Albacete, J.A. Pascual. 2011a. The interaction with arbuscular mycorrhyzal fungi  or Trichoderma  harzianum alters  the  shoot hormonal  profile  in  melon  plants.  Phytochem. 72:223-229.

## J. Agron. Indonesia 44 (2) : 197 - 203 (2016)
Martínez-Medina,  A.,  A.  Roldán,  J.A.  Pascual.  2011b. Interaction  between  arbuscular  mycorrhizal  fungi and Trihoderma harzianum under conventional and low input fertilization field condition in melon crops: growth response and Fusarium wilt biocontrol. Appl. Soil Ecol. 47:98-105.
Miransari,  M.  2011.  Interaction  between  arbuscular mycorrhizal fungi and soil bacteria. Appl. Microbiol. Biotechnol. 89:917-930.
Ortas, I. 2012. The effect of mycorrhizal fungal inoculation on  plant  yield,  nutrient  uptake  and  inoculation effectiveness under long-term field conditions. Field Crop Res. 125:35-48.
Phillips, J.M., D.S. Hayman. 1970. Improved procedures for clearing  roots  and  staining  parasitic  and  vesicular- arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. T. Brit. Mycol. Soc. 55:158-161.
Porras-Soriano, A., M.L. Soriano-Martín, A. Porras-Piedra, R.  Azcón.  2009.  Arbuscular  mycorrhizal  fungi increased  growth,  nutrient  uptake  and  tolerance  to salinity in olive trees under nursery condition. Plant Physiol. 166:1350-1359.
Ruíz-Sánchez,  M.,  E.  Armada,  Y.  Mu˜noz,  I.E.G.  de Salamone,  R. Aroca,  J.M.  Ruíz-Lozano,  R. Azcón.
2011. Azospirillum and  arbuscular  mychorrhizal colonization enhance rice growth and physiological traits  under  well-watered  and  drought  conditions. Plant Physiol. 168:1031-1037.
Sensoy, S., S. Bicer, H. Unsal. 2013. Arbuscular mycorrhizal fungi affect seedling growth of melon hybrid cultivars. Int. J. Agric. Biol . 15:392-394.
Smith,  S.E.,  D.J.  Read.  1997. Mycorrhizal  Symbiosis .  Ed ke-2. San Diego, California, USA: Academic Press.
Srivastava,  L.M.  2002.  Plant  Growth  and  Development,
Hormone  and  Environment. Academic  Press,  Publ. San Diego, California, USA.
Srivastava,  N.K.,  D.K.  Srivastava,  P.  Singh.  2012.  A preliminary  survey  of  the  vesicular  arbuscular mycorrhizal  status  of  vegetable  and  fruit  yielding plants in Eastern U.P. Indian J. L. Sci. 1:79-82.
Taiz, L., E. Zeiger. 2006. Plant Physiology. Ed ke-4. Sinauer Associaties,  Inc.,  Publ.  Sunderland,  Massachusetts, USA.
Walter, M.H., D.S. Floss, D. Strack. 2010. Apocarotenoid: hormones,  mycorrhizal  metabolites  and  aroma volatiles. Planta 232:1-17.