## Identifikasi Jenis-jenis Fungi yang Potensial terhadap Pembentukan Gaharu dari Batang Aquilaria spp.
Identification the Potential Types of Fungi on Establishment Agarwood Stem of Aquilaria spp.
Sri Wilarso Budi R 1 ., Erdy Santoso 2 & Akhmad Wahyudi 1
1 Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan IPB
2 Laboratorium Mikrobiologi Hutan Pusat Penelitian dan Pengembangan Hutan dan Konservasi Alam (P3HKA)

## ABSTRACT
One of tree genus that becomes the main source of agarwood producer is Aquilaria. The formation of agarwood was believed  as  response  of  agarwood  trees  to  many  factors,  likes  plant  physiological  and  pathogenic  fungi  infection.  A number of isolates that have the potential to induce agarwood has been isolated from wood samples from different areas such as Bangka, Bogor, Bohorok, Gorontalo, East Kalimantan, Lampung, Mentawai, Papua, and Sukabumi. This study aimed  to  obtain  information  on  the  types  of  fungi  isolated  from stem-forming  agarwood  Aquilaria  spp  that  successful collection  of  Microbiology  Laboratory  of  Forestry  Research  in  Bogor.  Identification  was  done  by  observing morphological  features  from  cultured  isolates  on  PDA  and  BLA.  The  results  of  identification  of  isolates  collection include species of Fusarium solani (Mart.), Appell and Walenw, F. tricinctum (corda) Sacc, F sambucinum Fuckel, and F. Moniliformae
Key words : Identification, fungi, fusarium, Aquilaria spp.

## PENDAHULUAN
Gaharu merupakan salah satu komoditi Hasil Hutan Bukan  Kayu  (HHBK)  yang  harganya  lebih  tinggi dibandingkan  HHBK  lainnya  (Wiyono  dan  Sumarkani 1998).  Gaharu  digunakan  sebagai  bahan  dasar  dalam industri  parfum,  dupa,  kosmetik,  dan  obat-obatan (Sumarna  2002).  Sehingga  gaharu  bisa  dikatakan sebagai  salah satu  jenis komoditi  HHBK  yang memliki nilai  multiguna.  Genus Aquilaria merupakan  tanaman yang  menjadi  sumber  utama  penghasil  gaharu,  selain Gyrynops sp, Gonystylus sp, dan Aetoxylon sympetallum .  Bentuk  produk  yang  diperdagangkan dapat berupa  kayu  bulatan, potongan, serutan, cacahan, bubuk  dan  minyak  (hasil  penyulingan).  Saat  ini Aquilaria dikategorikan sebagai  tumbuhan langka  yang harus  dilindungi,  yang  termasuk Apendix II  CITES ( Convention  on  International  Trade  in  Endangered Species ),  yang  perdagangannya  harus  dikendalikan  dan kuota ekspor dibatasi (Barden et al . 2000).  Berdasarkan fakta  ini  pengembangan  teknik  khusus  untuk  produksi gubal  gaharu  berkualitas  tinggi  dan teknik  pemungutan yang  selektif  (tanpa  harus  menebang  seluruh  pohon gaharu) sangat dibutuhkan untuk melindungi keberadaan  pohon  penghasil  gaharu  di  alam.  Menurut Raffa et  al .  (1985)  gaharu  terbentuk  karena  adanya produksi  dan  akumulasi  senyawa  resin  di  dalam jaringan  batang  tanaman  penghasil  gaharu.  Produksi resin ini  merupakan bagian dari  mekanisme pertahanan tanaman  terhadap  serangan  hama  dan  fungi  patogen. Laboratorium  Mikrobiologi  Hutan  Pusat  Penelitian  dan Pengembangan  Hutan  dan  Konservasi  Alam  (P3HKA) memiliki  koleksi  isolat fungi dari  batang Aquilaria dari
berbagai lokasi di Indonesia yang belum teridentifikasi. Mengingat  beragamnya  jenis  fungi  yang  berpotensi menginduksi  gaharu,  maka  perlu  dilakukan  identifikasi terhadap  isolat-isolat  koleksi  yang  ada.  Tujuan penelitian  ini  adalah  untuk  mendapatkan  informasi tentang  jenis-jenis  isolat  fungi  pembentuk  gaharu  dari batang Aquilaria spp.  yang  menunjukan  gejala pembentukan gaharu.

## BAHAN DAN METODE
Tempat dan Waktu. Penelitian identifikasi koleksi isolat  fungi  dari  beberapa  batang Aquilaria spp. dilakukan  di  Laboratorium  Mikrobiologi  Hutan  kantor Pusat  Penelitian  dan  Pengembangan  Hutan  dan Konservasi  Alam  (P3HKA)  Bogor.  Penelitian  ini dilaksanakan  mulai  bulan  Juli  2009  sampai  dengan Oktober 2009.
Alat  dan  Bahan. Alat  yang  digunakan  seperti laminar,  autoklaf,  open,  mikroskop  cahaya  kamera digital,  cawan  petri  dsb.  Bahan  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  isolat  fungi  yang  diperoleh  dari batang Aquilaria yang telah menunjukkan pembentukan gaharu  secara  alami  di  lapangan.  Batang Aquilaria diambil  dari  beberapa  tanaman  gaharu  yang tersebar  di beberapa  daerah  di  Indonesia  (Tabel  1).  Media  yang digunakan untuk perbanyakan dan memacu pembentukan struktur reproduksi/ morfologi  fungi yang diperoleh adalah media agar air ( Water Agar , 2% agar), media  agar  kentang  dekstrosa  (PDA/ Potato  Dextrose Agar )  dan  media  BLA  ( Banana  Leaf  Agar ).  Larutan pewarna lactophenol  cotton  blue digunakan  untuk memperjelas ciri morfologi fungi saat diamati di bawah mikroskop.

## JURNAL SILVIKULTUR TROPIKA Vol. 01 No. 01 Desember 2010, Hal. 1 – 5 ISSN: 2086-8227
Sri Wilarso Budi R. et al.
Tahap  persiapan. Tahap  awal  yang  perlu diperhatikan  adalah  sterilisasi,  baik  bahan  maupun  alat yang  digunakan.  Sterilisasi  cawan  petri  dilakukan dengan  dua  tahap,  pertama  cawan  petri  direbus  dalam air hingga mendidih kemudian ditiriskan di bawah sinar matahari  hingga  kering,  selanjutnya  cawan  petri dibungkus  dengan  koran.  Tahap  kedua  cawan  petri dimasukkan ke dalam open dengan suhu 180 o C  selama tiga  jam. Sterilisasi media  untuk  peremajaan  cendawan dilakukan  dengan  cara  sterilisasi  panas-lembab  yaitu menggunakan autoklaf dengan uap air jenuh bertekanan 1  atm selama  15  menit  pada  suhu  121 o C.  Sterilisasi alat-alat  seperti  jarum  inokulasi dilakukan  dengan  cara pembakaran  atau  bisa  juga  dengan  merendam  terlebih dahulu dalam alkohol 70%.
Peremajaan  isolat. Tujuan  peremajaan  isolat  yaitu untuk  memacu  pembentukan  struktur  reproduksi/ morfologi fungi. Beberapa media yang digunakan untuk proses  peremajaan  isolat  diantaranya:  media  PDA ( Potato  Dextrose  Agar ),  komposisi  satu  liter  PDA terdiri atas kentang 200 gram, agar/gel 20 gram  dan 15 gram  Dextrose,  kemudian  media  agar air  ( Water  Agar, 2%  agar)  terbuat  dari  1  liter  air  steril/ miliqeu dan  20 gram agar  (1 liter  larutan Water  Agar ).  Media  tersebut disterilkan  dalam  autoclaf  dengan  suhu  121 0 C  dengan tekanan  1  atm  selama  20  menit.  Media  yang  sudah disterilisasi  dituangkan  ke  dalam  cawan  petri,  tunggu hingga  media  dingin  dan  membeku,  selanjutnya  isolat fungi dimasukkan ke dalam media yang telah disiapkan dengan  menggunakan  jarum ose di  dalam laminar  air flow  cabinet. Kemudian  kultur  diinkubasi  pada  suhu kamar selama waktu yang ditentukan.
Pengamatan  morfologi  fungi. Morfologi  fungi yang  diamati harus  dilakukan melalui  peremajaan  pada cawan  petri  terlebih  dahulu.  Bahan  induk  untuk peremajaan  menggunakan  isolat  yang  sudah  ada  di laboratorium  mikrobiologi  Puslitbang  Bogor  dan  sudah dimurnikan.  Pengamatan  morfologi  fungi  dilakukan dengan  beberapa  tahapan  kerja  yang  berbeda  di antaranya :
1. Mengukur  dan  mengamati  laju  pertumbuhan  koloni fungi  dan warna. Cara  yang dilakukan yaitu  dengan menumbuhkan  masing-masing  isolat  pada  media PDA  di  cawan  petri,  yang  diinkubasi  pada  suhu kamar  dan  diletakkan  di  ruangan  dengan  pen- cahayaan  yang  cukup.  Diameter  koloni  yang  terjadi diukur  secara  vertikal,  diagonal  dan  horizontal
selama  tujuh  hari.  Warna  dan  ada  tidaknya aerial hifa ditentukan pada hari ke tujuh. 2. Mengamati bentuk karakteristik konidofor ( phyalide ).  Bentuk  karakteristik  konidofor  dapat diamati  dengan slide  culture ,  yang  dibuat  dengan cara  mengambil  sejumlah  kecil  koloni  jamur  pada medium  PDA  (ukuran  kurang  lebih  0,3  cm 2 ),  lalu diletakkan  pada object  glass dan  ditutup  dengan cover  glass . Slide  culture diletakkan  pada  cawan petri  steril  yang  dipertahankan  kelembapannya, dengan  meletakan tissue /kertas  saring  yang  telah dibasahi  dengan aquades  steril.  Setelah diinkubasi selama  24-72  jam  pada  suhu  kamar, slide  culture dilihat di bawah mikroskop.
3. Mengukur dan mengamati bentuk ukuran makro dan mikrokonidia.  Bentuk  ukuran  makro  dan  mikro- konidia  diamati  berdasarkan  isolat  yang  di  tumbuh- kan  pada  BLA.  Pada  media  alami  ini  struktur sporodokia,  juga  makrokonidia  yang  dibentuknya dapat  diamati.  BLA  dibuat  sesuai  metode  Nelson et al. (1983)  dengan  cara  meletakkan  potongan  daun pisang  berukuran  ±  1  cm 2 yang  telah  disterilisasi pada temperatur 121 0 C pada cawan petri yang berisi media WA ( Water Agar , 2 % agar). Cuplikan koloni isolat  jamur  diletakkan  di  antara  potongan  daun pisang tersebut.  Kemudian kultur  diinkubasi  selama 10-14  hari  pada  suhu  kamar  dengan  pencahayaan 100-130  lux.  Koloni  jamur  yang  tumbuh  pada  per- mukaan daun pisang diamati di bawah mikroskop.
Tahap  identifikasi. Identifikasi  isolat  berdasarkan pada  kunci  identifikasi  Nelson et  al . (1983),  John  F. leslie  &  Brett  A.  Summerell  (2006)  dengan  ditunjang kunci  identifikasi  yang  diusulkan  oleh  Booth  (1971). Penentuan  warna  koloni  mengacu  pada A  Mycological Colour Chart (Rayner, 1970).
Tabel 1.  Daftar isolat yang diamati
No Kode isolat Asal lokasi
1 2
3 4 5
6 7
8 9 10 BGK BHRK BGR GRTL KALTIM LPG MTW NTB PAPUA 1
SKBM
Bangka Bahorok (Medan) Bogor Gorontalo Kalimantan Timur Lampung
Mentawai Nusa tenggara  Barat Papua 1
Sukabumi
Sumber: Lab  mikrobiologi  Pusat  Penelitian  Dan  Pengembangan Hutan dan Konservasi Alam (P3HKA) Bogor

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil. Hasil pengukuran pertumbuhan radial berbagai isolat (Tabel 2)
Tabel 2.  Pertumbuhan isolat pada cawan petri yang diukur secara vertical, horizontal dan diagonal selama tujuh hari
No Isolat Rata-rata Diameter (cm) Pertumbuhan Isolat per Hari 1 2 3 4 5 6 7 1 Bangka 0.9 1.8 3.1 4.1 3.8 4.3 4.4 2 Bogor 0.8 1.8 2.8 3.3 3.8 4.1 4.2 3 Bohorok 1.2 2.1 2.4 4.6 5.8 7 7.6 4 Gorontalo 0.8 2.3 2.6 4.5 5.1 5.9 6.6 5 Kaltim-Lk 1.2 2.4 3.5 4.9 5.9 6.8 7.5 6 Lampung 1 1.9 2.6 3.7 4.6 5.7 6.2 7 Mentawai 1 1.9 3 3.9 4.6 5 5.3 8 NTB 1.2 2 3.1 3.7 5.2 6.9 7.5 9 Papua 0.9 1.6 2.7 3.5 4.5 5.5 6.3 10 Sukabumi 0.9 1.8 2.6 3.5 4.4 5.4 6.2
Warna  bawah  koloni  berdasarkan A  Mycological  Colour  Chart (Rayner  1970)  dari  masing-masing  isolat disajikan pada Gambar 1 A-J.
A (Bangka)                    B (Bogor)
C (Bohorok)               D (Gorontalo)             E (Kaltim-Lk) F (Lampung)               G (Mentawai) H (NTB)                     I (Papua 1)                J (Sukabumi) Gambar 1. A-J. Warna koloni isolat fungi
Keterangan warna: Bangka: Apricot ,  Bogor: Peach ,  Bohorok: Putih / Buff ,  Gorontalo: Bay/Scarlet ,  Kaltim  Lk: Pale  violet/Lavender , Lampung: Salmon , Mentawai: Apricot , NTB: Putih / Buff , Papua1: Saffron/Salmon , Sukabumi: Putih / Buff .
Berbagai ciri morfologi fungi (Gambar 2-6).
Gambar 2. Contoh Sporodokia yang ditemukan Gambar 3. Makrokonidia dari sporodokia Gambar 4. Klamidospora tunggal berpasangan dan bergerombol Gambar 5.  Klamidospora tunggal, berpasangan dan bergerombol
Gambar 6. Konidiofor monophialid
Sri Wilarso Budi R. et al.

## Hasil pengukuran dimensi makro dan mikrokonidia (Tabel 3)
Tabel 3.  Hasil pengukuran dimensi pada makrokonidia & mikrokonidia
No Asal Dimensi (µm) Mikrokonidia Makrokonidia 1 Bangka (7,5-15) x (2,5-3,8) (27,5-47,5) x (5-10) 2 Bogor (2,5-17,5) x (1,3-3,8) (32,5-55) x (3,8-6,3) 3 Bohorok (5-15) x (3,8-6,3) (20-32,5) x (2,5-5,0) 4 Gorontalo (6,3-16,3) x (1,3-3,8) (32,5-55) x (3,75-6,3) 5 Kaltim Lk (5-17,5) x (2,5-3,8) (27,5-45) x (2,5-3,8) 6 Lampung (5-17,5) x (2,5-3,8) (25-12,5) x (35-40) 7 Mentawai (2,5-11,3) x (1,3-3,8) (42,5-55) x (2,5-3,8) 8 NTB (2,5-11,3) x (2,5-3,8) (45-62,5) x (2,5-3,8) 9 Papua (2,5-17,5) x (1,3-5,0) (25-40) x (2,5-5,0) 10 Sukabumi (3,8-11,3) x (2,5-3,8 -
Pembahasan
Karakteristik  morfologi. Karakteristik  morfologi Fusarium bisa  diketahui  secara  lengkap  dengan menggunakan  beberapa  metode  yang  telah  dijelaskan pada  bab  sebelumnya.  Ciri  utama  untuk  identifikasi Fusarium yang benar, yaitu  adanya  makrokonidia yang dibentuk  dari  sporodokia,  diperoleh  pada  biakan  fungi pada  media  BLA  ( Banana  Leaf  Agar )  yang  diekspos terhadap  cahaya.  Adanya  cahaya  berpengaruh  terhadap pertumbuhan sporulasi fungi. Hawker (1971) melaporkan  beberapa  spesies  yang  dibiakkan  dalam cawan  petri  menunjukkan  zona  produksi  makrokonidia sebagai  respon  terhadap  cahaya.  Cahaya  ini  meng- induksi  pertambahan  panjang  dan  jumlah  septa makrokonidia pada beberapa spesies Fusarium. Adapun media PDA hanya dapat menginduksi morfogenesis dari aerial  miselia.  Seifert  (1996)  menyatakan  bahwa makrokonidia  harus  diamati  dari  koloni  yang  tumbuh pada  media  SNA  ( Synthetic  Nutrient  Agar ),  CLA ( Carnation  Leaf  Agar ),  atau  BLA.  Makrokonidia  yang dibentuk  koloni pada media PDA dipergunakan sebagai alternatif  terakhir,  karena  makrokonidia  yang terbentuk cenderung  bervariasi.  Karakteristik  morfologi  fungi yang  diamati  meliputi  karakteristik  koloni  fungi  pada media  PDA  meliputi  warna,  aerial  miselium,  rata-rata pertumbuhan  diameter  fungi  pada  cawan  petri, kemudian  karakteristik  makro  dan  mikrokonidia, sporodokia  dan  klamidospora.  Hasil  pengamatan sepuluh  isolat  secara  umum  menunjukkan  hampir semuanya  ditemukan  ciri  morfologi  yang  lengkap, namun ada  beberapa karakteristik yang menjadi  catatan diantaranya  belum  semua  makrokonidia  yang  diukur berasal  dari  sporodokia.  Hal  ini  terjadi  karena  tidak semua  media  biakan  berhasil  ditemukan  adanya sporodokia,  dari  sepuluh  isolat  hanya  ada  enam  yang diketahui  sporodokianya.  Ada  beberapa  kemungkinan yang  menjadi  penyebab  hal  tersebut.  Pertama,  diduga spesies  tersebut  memang  tidak  mempuyai  sporodokia, karena  beberapa  jenis Fusarium diketahui  tidak menghasilkan  sporodokia.  Kedua,  diduga  pembentukan sporodokia  terhambat  karena  kurang  meratanya  proses pencahayaan  pada  saat inkubasi di  bawah  lampu. Adapun isolat yang tidak ditemukan adanya sporodokia yaitu  dari  daerah  Bogor,  Kaltim,  Mentawai  dan Sukabumi.  Untuk  klamidospora  yang  berhasil  diamati secara  umum  mempunyai  empat  bentuk,  yaitu  tunggal, berpasangan, berantai dan bergerombol. Hasil pengamatan  sepuluh  isolat  yang  dilakukan hanya  isolat
dari Mentawai yang tidak ditemukan adanya klamidospora.
Jenis  fungi  yang  ditemukan. Penelitian  mengenai isolasi dan identifikasi terhadap fungi yang menginduksi gaharu  pada  pohon Aquilaria spp.  yang  diperoleh  dari berbagai lokasi di Indonesia telah dilakukan sebelumnya oleh  para  peneliti  dari  Mikrobiologi  Puslibang Kehutanan Bogor. Hasil penelitian tersebut menyatakan bahwa kelompok Fusarium merupakan jenis yang relatif sering ditemukan pada  batang Aquilaria spp. Hasil dari penelitian  identifikasi  terhadap  koleksi  isolat  kali  ini tidak  jauh berbeda  dari  penelitian sebelumnya. Sepuluh isolat  yang  diteliti  enam  diantaranya  adalah  jenis F. solani (Mart)  Appel  &  Wollenw  diperoleh  dari  gaharu yang  ditanam  di  Bangka,  Bohorok,  Gorontalo, Lampung,  NTB  dan  Papua1,  kemudian F.  Lateritium Ness  diperoleh  dari  Kaltim  Lk,  selanjutnya F. tricinctum (Corda)  Sacc  diperoleh  dari  Bogor,  dan F. moniliformae Sheldon  diperoleh  dari  Mentawai.  Untuk isolat  yang  berasal  dari  Sukabumi  belum  berhasil diidentifikasi,  karena  dari  beberapa  metode  yang digunakan  belum  ditemukan  makrokonidia  baik  yang bersal  dari  aerial  miselia  maupun  sporodokia.    Dari media  PDA  dan  BLA  baru  menemukan  mikrokonidia dan  klamidosfor.  Diduga  isolat  tersebut  bukan  jenis Fusarium karena  dari  klamidospora  dan  mikrokonidia yang  ditemukan  berbeda  dengan  sembilan  isolat lainnya.  Untuk  membedakan  genus  Fusarium  dengan genus lain yang mempunyai kemiripan secara morfologi seperti Cylindrocarpon , Booth (1966) dapat memisahkannya  dengan  cara  melihat  ciri  khusus Fusarium yang  mempunyai  bentuk  makrokonidia seperti bulan sabit ( fusoid ) dan pangkal  konidia dengan bentuk sel kaki ( huck/Foot cell ) sedangkan Cylindrocarpon memiliki  pangkal  konidia  yang  relatif tumpul.
Fusarium spp  merupakan  salah  satu  fungi  yang mempunyai sebaran yang sangat luas dengan jenis yang beragam.  Backhouse et  al. (2001)  menyatakan  bahwa kelimpahan Fusarium ada  pada  setiap  bagian  dunia kecuali  tempat  yang  ekstrim,  sehingga  satu strain dengan strain lain  relatif  sulit  untuk  dibedakan.  Ada empat spesies yang berhasil diidentifikasi dari Aquilaria spp  yaitu F.  solani , F. lateritium , F. tricinctum dan F. moniliformae .  Di  antara  keempat  spesies  tersebut F. solani yang  paling  banyak  ditemukan. F.  solani dibedakan dengan F. tricinctum berdasarkan karakteristik bentuk makrokonidia juga bentuk mikrokonidia  yang  relatif  lebih  besar  untuk F.  solani
Identitikasi Jenis-jenis Fungi yang Potensial terhadp Pembentukan Gaharu 5
dan mikrokonidia  umumnya  berbentuk  elips,  kemudian F.  solani dapat  dibedakan  dengan F.  lateritium berdasarkan  karakter  makrokonidianya  lebih  ramping untuk F.  lateritium .  Sedangkan F.  moniliformae mempunyai ciri khusus tidak mempunyai klamidospora. Menurut Agustini et al . (2006), kebanyakan spesies dari Fusarium merupakan fungi yang bersifat kosmopolitan, sehingga untuk membedakan spesies Fusarium merupakan  hal  yang  kompleks,  karena  variasi  yang ditemukan  dalam  satu  spesies  sangat  besar.  Tanaman yang  menjadi  inang Fusarium bisa  membantu  dalam identifikasi  terutama  untuk Fusarium yang  potogenik, tetapi  untuk  yang  saprofit  atau  patogen  yang  lemah memerlukan pengamatan yang menyeluruh.
Jenis F. solani bisa  dikatakan patogen penting pada tanaman  salah  satunya  pada Aquilaria spp. Strain ini banyak  ditemukan  di  berbagai  tempat  karena  sifatnya yang  kosmopolit.  Booth  (1971);  Nelson et  al .  (1983) melaporkan F. solani, F. tricinctum , dan F. sambucinum merupakan  spesies  yang kosmopolit ,  walaupun  tidak sedikit  spesies dari kelompok ini  yang bersifat saprofit. Beberapa penelitian yang pernah dilakukan sebelumnya melaporkan  keberadaan F.  solani pada  tanaman penghasil  gaharu.  Penelitian  Sidiyasa  dan  Suharti (1987)  menyatakan  bahwa  berbagai  jenis  jamur  seperti Diplodia sp., Pythium sp. dan F. solani berperan dalam pembentukan  resin  gaharu.  Umboh et  al. (2000) menggunakan jamur F. oxyforum , F solani , Scyttallidium  sp ., Libertella  sp .,  dan Trichoderma  sp . Untuk  memacu  terbentuknya  gubal  pada Aquilaria malaccensis dan A.  crassna pierre  ex  Laconte. Kemudian F.  solani juga mempunyai  karakteristik morfologi  yang  cukup  beragam,  dari  beberapa pengarang/ penulis buku  menginterpretasikan F. solani dengan  karakteristik  yang  sedikit  berbeda,  sehingga terkadang  sama-sama F.  solani namun  ada  perbedaan pada sifat  morfologinya . Sedangkan adanya  perbedaan di  antara strain Fusarium yang  ditemukan  diduga adanya  keterkaitan  dengan  lokasi,  saat  pengambilan sampel, dan juga kondisi ekologi masing-masing lokasi. Hal  ini  berkaitan  dengan habitat Fusarium yang  sangat luas.

## KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  identifikasi  koleksi  fungi  hasil isolasi  pada  lokasi  penanaman Aquilaria spp.  yang tersebar  di  beberapa  daerah,  diperoleh  empat  spesies Fusarium yaitu F.  solani (Mart)  Appel  &  Wollenw ,  F.
Lateritium Ness ,  F.  tricinctum (Corda)  Sacc  dan F. moniliformae Sheldon.

## DAFTAR PUSTAKA
Agustini  L,  Wahyuno  D  &  Santoso  E.  2006.  Keanekaragaman  Jenis Jamur yang Potensial Terhadap Pembentukan Gaharu dari Batang Aquilaria spp. J  Penelitian  Hutan  dan  Konservasi  Alam 3  (5): 555-564.
Backhouse D. 2001. Biogeography  of  Fusarium . Di dalam;  Breet  A. Summerell,  John  F  Leslie,  David  Backhouse,  Wayne  L.  Bryden, Lester  W.  Burgess,  editor. Fusarium, Paul  E.  Nelson  Memorial Symposium. Minnesota: APS Press. Hlm 122-137.
Booth C. 1966. The Genus Cylindrocarpon . England: Commonwealth Mycological Institute.
Booth  C.  1971.  The  Genus Fusarium .  England:  Commonwealth Mycological Institute.
Gandjar  I.  Sjamsuridzal  W.  &  Oetari  A.  2006. Mikologi  Dasar  dan Terapan . Jakarta: Yayasan Obor Indonesia.
Hawker, L. E. 1971. The  Physiology of  Reproduction in Fungi . New York: Hafner Publishing Company.
John F. leslie & Brett A. Summerell. 2006. The Fusarium Laboratory Manual . USA: Blackwell Publishing Profesional.
Nelson  P.E.,  T.A.  Tousson,  &  W.F.O.  Marasas.  1983. Fusarium spesies  an  Illustrated  Manual  for  Identification .  University  Park & London: The Pennsylvania State University Press.
Raffa,  K.F,  A.A.  Berryman,  J.  Simasko,  W.  Teal,  dan  B.L.  Wong. 1985.  Effect  of  grand  fir  monoterpenes  on  the  firengraver, Scolytus ventralis, and its symbiotic fungus. Environ Entomol 14: 552-556.
Rayner,  R.W.  1970. A  mycological  colour  chart .  Commonwealth England: Mycological institute & British Mycological Society.
Seifert  K.  1996.  Fuskey  –  Fusarium  Interactive  Key.  Agriculture  &
Agri-Food Canada. http://www.ctu.edu.vn/colleges/agri/gtrinh/fuskey.pdf. [diakses: 07 September 2009].
Sidiyasa  K,  dan  M.  Suharti.  1987.  Jenis-Jenis  Tumbuhan  Pengahasil Gaharu.  Makalah  Utama  Diskusi  Pemanfaatan  Kayu  Kurang dikenal. Cisarua, Bogor, 13-14 Januari 1987.
Sumarna Y. 2002. Budidaya Gaharu . Seri Agribisnis. Jakarta: Penebar Swadaya.
Umboh  M.I.J,  G  Rahayu,  &  H  Affandi.  2002.  Upaya  peningkatan produksi  gubal  gaharu:  mikropropogasi Aquilaria sp.  dan  upaya peningkatan  bioproses  gubal  gaharu.  laporan  Riset  Unggulan Terpadu  v  Bidang  Teknologi  Perlindungan  lingkungan.  Jakarta: Kantor Mentri Negara Riset dan Teknologi.
Wiyono  B,  Sumarliani  N.  1998. Penyusunan  Standar  Mutu  Gaharu . Bogor:  Pusat  Penelitian  Pengembangan  Hasil  Hutan  dan  Sosial Ekonomi Kehutanan.