## APLIKASI PAKAN ALAMI DAN BUATAN PADA PEMELIHARAAN LARVA UDANG VANNAME (Litopenaeus vannamei) DI HATCHERY PT. SURI TANI PEMUKA UNIT HATCHERY NEGARA, BALI
APPLICATION OF LIVE AND ARTIFICIAL FEED ON LARVAL REARING OF VANNAME (Litopenaeus vannamei) IN PT. SURI TANI PEMUKA HATCHERY UNIT

## OF NEGARA, BALI
Asep Akmal Aonullah 1* , Aliyati Maninda 1
Program Studi Teknik Budidaya Perikanan, Politeknik KP Sidoarjo, Sidoarjo Email: asep.pkpsda@gmail.com

## ABSTRACT
This study aims to determine the application of live and artificial feed in the rearing of vanname shrimp  larvae  (Litopenaeus  vannamei).  The  work  consists  of  preparation  of  rearing  media,  nauplii stocking, feed management and monitoring of larval rearing. A total of 2,000,000 nauplii were used and reared in concrete tanks with a water volume capacity of 14 tons equipped with a filtration system and water changes carried out by flowtrough and circulation. The feed used consisted of livel feed including Chaetoceros muelleri, Thalassiosira sp and Artemia sp . and also artificial feed (commercial feed). The results  showed  that  the  application  of  live  and  artificial  feed  during  larval  rearing  was  positively correlated with larval stadia development and larval survival rate. Larval development in each stadia, including zoea, mysis and post larvae, showed normal development. The total larval population at each stadia decreased with a final mortality value of 40%. Nevertheless, the survival rate until the end of the PL-10 rearing period was observed to be 60% and this condition was in optimal condition.

## Kata Kunci: Live Feed, Artificial Feed, Larval Rearing, L.vannamei

## ABSTRAK
Upaya  peningkatan  hasil  produksi  pada  pemeliharaan  larva  udang  vanname  salah  satunya ditunjang oleh jenis dan ketersediaan pakan. Pakan alami merupakan  pakan utama dan memiliki peran penting  dimana  baik  secara  jenis,  kualitas  maupun  ketersediaannya  dalam  jumlah  yang  tepat  akan menunjang  pertumbuhan  yang  optimal  dan  keberhasilan  produksi.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk megetahui  aplikasi  pakan  alami  dan  buatan  pada  pemeliharaan  larva  udang  vanname  ( Litopenaeus vannamei ). Tahap pelaksanaan kegiatan terdiri dari persiapan media pemeliharaan, penebaran nauplii, manajemen pakan dan monitoring pemeliharaan larva. Nauplii yang digunakan sebanyak 2.000.000 ekor dan dipelihara dalam wadah pemeliharaan berupa bak beton dengan kapasitas volume air 14 ton yang dilengkapi dengan sistem filtrasi serta pergantian air dilakukan secara flowtrough dan sirkulasi. Pakan yang digunakan terdiri dari pakan alami meliputi Chaetoceros muelleri , Thalassiosira sp. dan Artemia sp. serta dan pakan buatan (komersil). Hasil penelitian menunjukkan aplikasi pakan alami dan buatan selama masa pemeliharaan larva mendukung perkembangan stadia larva dan tingkat kelangsungan hidup larva. Perkembangan larva pada tiap stadia baik zoea , mysis dan post larva menunjukkan perkembangan yang normal. Jumlah populasi larva pada tiap stadia mengalami penurunan dengan nilai mortalitas akhir sebesar  40%.  Namun  demikian,  tingkat  kelangsungan  hidup  hingga  akhir  masa  pemeliharaan  PL-10 teramati sebesar 60% dan masih termasuk pada kondisi optimal.
Keywords: Pakan Alami, Pakan Buatan, Pemeliharaan Larva, L.vannamei

## I. PENDAHULUAN
Produksi  udang  vanname  semakin berkembang  pesat  dengan  didukung  oleh
unit hatchery yang  mampu  menyediakan benih berkualitas dalam skala besar, bebas patogen  ( specific  pathogen  free )  dan mampu  dibudidayakan  dalam  kepadatan
Chanos chanos
Vol. 20 No. 2, Hlm.105 – 115, Desember 2022 p-ISSN      : 1693-6299                                         http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/chanos2 e-ISSN      : 2808-1145 DOI: 10.15578/chanos.v20i2.11838
tinggi.  Udang  vanname  juga  memiliki banyak  keunggulan  dibandingkan  dengan jenis udang lainnya, diantaranya pertumbuhan  yang  lebih  cepat,  tahan terhadap  penyakit,  memiliki  toleransi  luas terhadap  perubahan  kondisi  lingkungan, serta  kelangsungan  hidup  yang  tinggi  dan konversi  pakan  yang  rendah  (Hendrajat et al ., 2007).
Upaya peningkatan produksi udang vanname  salah  satunya  dilakukan  melalui penambahan  kuantitas  benur.  Namun demikian, kualitas benur yang rendah masih menjadi  kendala  utama.    Pada  tahap pemeliharaan larva yang dimulai dari stadia nauplius,  zoea,  mysis sampai  pada  stadia post  larva ,  kendala  yang  banyak  terjadi umumnya pada stadia zoea sampai ke tahap mysis. Tingkat  kelulushidupan  pada  tahap zoea sampai  pada mysis tergolong  rendah, dimana  tingkat  kematian  pada  tahap zoea dapat  mencapai  90%  sebelum  memasuki tahap mysis (Elovaara,  2001).  Untuk  itu, ketersediaan  benur  secara  kontinyu  dan berkualitas (morfologi dan genetik) merupakan  prasyarat  utama  dalam  proses produksi yang perlu didukung oleh kondisi lingkungan  yang  ideal  serta  kecukupan jumlah dan kandungan nutrient pakan.
Ketersediaan pakan khususnya pada awal  tahap  perkembangan  larva  sangat penting untuk diperhatikan terutama secara kualitas dan kuantitas. Pakan yang baik dan memenuhi  persyaratan  kebutuhan  nutrien larva  akan  mendukung  pertumbuhan  larva udang vanname secara optimal. Jenis pakan yang  diberikan  pada  pemeliharaan  larva udang vanname terdiri  dari dua jenis  yaitu pakan alami (fitoplankton dan zooplankton) serta pakan buatan (komersil). Pakan alami merupakan  pakan  utama  dan  memiliki peran  penting  sebagai  sumber  pemenuhan gizi pada tahap awal kehidupan larva udang vanname  (Putri et  al .,  2020).  Ketersediaan pakan  baik  secara  jenis,  kualitas  maupun ketersediaannya  dalam  jumlah  yang  tepat akan menunjang pertumbuhan yang optimal dan  keberhasilan  produksi  (Perdana et  al .,
2021).  Mengingat  pentingnya  peran  pakan dalam menunjang pertumbuhan larva udang vanname,  maka  tujuan  dalam  penelitian terapan  ini  adalah  untuk  mengetahui aplikasi  pakan  alami  dan  buatan  yang diberikan  selama  masa  pemeliharaan kaitannya dengan pertumbuhan dan kelangsungan hidup larva udang vanname. Diharapkan  dari  penelitian  ini  dapat memberikan  informasi  teknis  tentang pengaplikasian jenis pakan yaitu alami dan buatan  yang  dilakukan  secara  tepat  baik kualitas maupun kuantitas guna menghasilkan  larva  udang  vanname  yang berkualitas.

## II. METODE PENELITIAN

## 2.1. Waktu dan Tempat
Penelitian  ini  dilaksanakan  di  PT. Suri  Tani  Pemuka  (STP)  Unit Hatchery Negara,  Desa  Penyaringan,  Kecamatan mendoyo,  Kabupaten  Jembrana,  Bali  pada bulan Maret 2020.

## 2.2. Pengumpulan Data
Pengumpulan data pada kegiatan ini mengacu pada Azwar (2010) yang meliputi data primer dan data sekunder. Data primer diperoleh  secara  langsung  melalui  metode partisipasi  aktif  serta  observasi  lapang sedangkan  data  sekunder  melalui  studi pustaka.  Penelitian  ini  terdiri  dari  empat tahap  kegiatan,  yaitu  diawali  dengan persiapan  media  pemeliharaan  selanjutnya penebaran nauplii ,  manajemen  pakan  dan monitoring  pemeliharaan  larva. Nauplii yang  digunakan  dalam  penelitian  ini sebanyak  2.000.000  ekor. Nauplii terlebih dahulu dilakukan karantina dan aklimatisasi sebelum  dipelihara  untuk  memastikan status  kesehatannya.  Wadah  pemeliharaan yang  digunakan  merupakan  bak  beton dengan  kapasitas  volume  air  14  ton  yang dilengkapi  dengan  sistem  filtrasi  serta pergantian air dilakukan secara flowtrough dan sirkulasi. Pakan yang digunakan terdiri dari pakan alami dan pakan buatan. Pakan
http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/chanos2 14
alami  yang digunakan meliputi pakan alga yaitu Chaetoceros muelleri dan Thalassiosira sp.  serta  pakan  zooplankton
yaitu Artemia  sp .  Adapun  pakan  buatan menggunakan pakan komersil sesuai dengan  kebutuhan  nutrien  dan  bukaan mulut  pada  tiap  stadia  larva  udang vanname. Aplikasi pakan alami dan buatan dilakukan dengan mempertimbangkan stadia  larva  selama  masa  pemeliharaan. Selanjutnya data aplikasi pakan dihubungkan  dengan  data  perkembangan larva  yang  diamati  setiap  hari  untuk memastikan normalitas perkembangan larva  mulai  dari  stadia nauplii sampai dengan post  larva-10 serta  kelangsungan hidup larva.

## 2.3. Analisis Data
Data  yang  terkumpul  selanjutnya dikelompokkan berdasarkan waktu pengukuran  yang  dilakukan  selama  satu siklus  produksi  dan  dianalisis  secara deskriptif  eksploratif.  Untuk  mengetahui perkembangan larva serta tingkat kelangsungan hidup larva dilakukan pengamatan  setiap  hari  mulai  dari  stadia Nauplii sampai dengan Stadia Post  Larva - 10.

## III. HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1. Persiapan Media Pemeliharaan
3.1.1. Pencucian Bak Tahap Pertama Persiapan media pemeliharaan dilakukan  untuk  memastikan  keberhasilan dalam pemeliharaan larva udang vanname. Persiapan  media  pemeliharaan  meliputi pencucian  wadah/bak  pemeliharaan  tahap pertama, sterilisasi, fumigasi dan pencucian bak  pemeliharaan  tahap  kedua.  Pencucian bak pemeliharaan tahap pertama dilakukan untuk  menghilangkan  sisa  kotoran  yang menempel dan mengendap sisa
pemeliharaan siklus sebelumnya.
Pencucian  dilakukan  dengan  menyemprot dan  menyikat  menggunakan scouring  pad
pada  seluruh  bagian  bak  menggunakan  air tawar.

## 3.1.2. Sterilisasi  Instalasi  Pipa  Air  Laut Dan Peralatan Produksi
Tahap  selanjutnya  adalah  proses sterilisasi  pada  instalasi  pipa  air  laut, peralatan  produksi  dan  sistem  filtrasi. Proses sterilisasi bertujuan untuk membunuh/menghilangkan
mikroorganisme  yang  tidak  diinginkan (Hidayat et  al .,  2019).  Sterilisasi  pipa  air laut  dilakukan  dengan  cara  penembakan pada  saluran  pipa  dengan  menggunakan larutan  formalin  dengan  dosis  2.000  ppm dan  didiamkan  selama  24  jam  kemudian dibilas  menggunakan  air  tawar  dan dilakukan  pengeringan.  Sterilisasi  pada peralatan  budidaya  dilakukan  dengan perendaman  menggunakan  formalin  dosis 500 ppm selama 10 jam, selanjutnya dibilas menggunakan  air  tawar  dan  dikeringkan. Sterilisasi  pada  sistem  filtasi  meliputi pembersihan  pada pressure  filter dan catridge  filter dengan  cara  direndam  pada larutan formalin dosis 2.000 ppm selama 24 jam.
3.1.3. Fumigasi  Dan  Pencucian  Bak
Tahap Kedua Setelah proses sterilisasi,
selanjutnya  dilakukan  tahapan  fumigasi yang  bertujuan  untuk  membunuh  bakteri maupun  mikroorganisme  yang  berada  di ruang pemeliharaan maupun bak pemeliharaan.  Fumigasi  dilakukan  dengan menyiapkan  100  gram  KMnO 4 yang ditambahkan  200  mL  formalin  kemudian disimpan  dalam  kaleng  untuk  proses penguapan. Setelah proses fumigasi langkah  terakhir  adalah  pencucian  bak pemeliharaan  tahap  kedua  yang  dilakukan dengan melakukan pencucian menggunakan detergent pada  seluruh permukaan bak kemudian dibilas menggunakan  air  tawar  dan  dikeringkan selama satu hari. Vol. 20 No. 2, Hlm. 105 – 115, Desember 2022
14
3.2. Penyediaan Air Media Pemeliharaan 3.2.1. Penyediaan  Dan  Perlakuan  Air Media Pemeliharaan
Air  media  pemeliharaan  yang digunakan terdiri dari air tawar dan air laut dengan terlebih dahulu dilakukan perlakuan menggunakan  sistem  filtasi  untuk  proses sterilisasi  melalui  pressure  filter  dan catridge filter yang berisi karbon aktif serta pasir silika yang bertujuan guna meminimalisir  adanya  agen  pembawa penyakit serta menurunkan kandungan besi. Pengambilan air laut dilakukan di perairan sekitar hatchery d engan jarak ±200 m yang diambil pada pagi atau sore hari saat air laut pasang.  Sumber  air  laut  yang  digunakan dilihat secara visual harus jernih dan bersih sepanjang  tahun  dan  umumnya  terdapat  di daerah  perairan  berpasir  atau  berkarang (Subaidah et al ., 2006). Selanjutnya, air laut dialirkan  pada  bak  tandon  volume  50  ton dan  diberi  kaporit  dengan  dosis  200  ppm kemudian  diaerasi  kuat  selama  4  jam.  Air laut  dinetralkan  menggunakan sodium thiosulfate dengan  dosis  10  ppm  dan diaerasi  kuat  selama  2  jam  kemudian
diberikan  larutan  EDTA  dengan  dosis  10 ppm dan diaerasi kuat selama 2 jam untuk selanjutnya  dialirkan  menuju  tandon  siap pakai (TSP). Sebelum masuk kedalam bak pemeliharaan, air dari TSP dilakukan filtasi terlebih  dahulu  menggunakan pressure filter dengan  tujuan  menghilangkan  bau, mengikat  racun  dan  sisa  kotoran  untuk selanjutnya  dialirkan  melewati UV  filter dan catridge filter  ke  modul  pemeliharaan larva.

## 3.2.2. Pengisian Air Media Pemeliharaan
Air  media  yang  telah  dilakukan perlakuan selanjutnya dimasukkan kedalam bak pemeliharaan larva. Pengisian dilakukan sebanyak 70% dari total volume bak  pemeliharaan  atau  sekitar  14  ton.  Air media yang sudah dimasukkan kedalam bak pemeliharaan selanjutnya dilakukan perlakuan sebelum penebaran nauplii untuk memastikan kualitas air pada saat pemeliharaan larva udang vanname. Perlakuan  pada  bak  pemeliharaan  larva udang vanname selengkapnya dapat dilihat pada Tabel 1.

## Tabel 1. Perlakuan Air Media Pada Bak Pemeliharaan Larva
Waktu Perlakuan Dosis Fungsi 21.00 EDTA 10 ppm Mengikat logam berat 21.00 Sodium 2 ppm Mengendapkan senyawa logam berat 21.00 Virkons 2 ppm Desinfektan 07.00 Vitamin C 1 ppm Imunitas larva 07.00 Epicin D 1,5 ppm Probiotik/kualitas iar 07.00 Biosol 2 ppm Probiotik/kualitas air
3.3. Penebaran Nauplii Nauplii yang  ditebar  merupakan hasil  pemijahan  induk  oleh  PT.  STP  unit hatchery Singaraja, Bali. Nauplii selanjutnya  dilakukan  karantina  untuk meminimalisir  adanya  agen  penyebab penyakit  pada  saat  proses  pengangkutan. Karantina nauplii dilakukan  pada  bak berkapasitas 500 L yang diisi air laut suhu 30-33°C  serta  diaerasi.  Tahap  aklimatisasi dilakukan  dengan  cara  kantong  plastik nauplii direndam singkat ( dipping ) dengan
larutan fumisida 100 ppm selama 2-3 detik, selanjutnya kantong  ditempatkan pada bak fiber berisi air laut bersuhu 33°C selama ±3- 5 menit. Apabila perbedaan suhu antara air dalam kantong dengan air wadah aklimatisasi  tidak  lebih  dari  1°C  maka kantong  plastik  dapat  dibuka  dan  nauplii dilepaskan  ke  dalam  bak  secara  perlahan. Proses aklimatisasi dilakukan untuk mencegah  tingginya  tingkat  kematian (mortalitas) pada saat dan setelah penebaran (Andriyanto et al ., 2013). Tahap http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/chanos2 14 3
selanjutnya, nauplii dibilas  dengan  larutan fumicide selama  10  detik,  kemudian dimasukan  ke  ember  yang  berfungsi sebagai tampungan sementara naupli untuk kemudian  ditebar  pada  bak  pemeliharaan larva  secara  perlahan.  Penebaran  pada  bak pemeliharaan  dengan  total  volume  air  14 ton dilakukan sebanyak 2.000.000 ekor atau dengan kepadatan 142 ekor/L.

## 3.4. Manajemen Pakan 3.4.1. Jenis Pakan
Pakan  alami  yang  digunakan  di hatchery PT.  STP  dibagi  dalam  dua  jenis yaitu pakan alga dan pakan artemia. Pakan alami  merupakan  pakan  utama  dalam menunjang awal perkembangan larva.  Pakan  alami  yang  diberikan  pada larva  akan  memberi  pengaruh  terhadap pertumbuhan  dan  pemenuhan  kebutuhan asupan  nutrien  yang  dibutuhkan  untuk tumbuh dan berkembang larva (Chanratchakool et  al .,  2005).  Pakan  alga yang digunakan adalah Chaetoceros muelleri dan Thalassiosira sp.  Pemilihan jenis  alga  tersebut  didasarkan  pada kandungan nutrien serta ukurannya. Chaetoceros sp.  merupakan  salah  satu pakan alami  yang umum digunakan dalam budidaya  akuakultur  karena  memiliki kandungan  protein  yang  tinggi  dan  mudah untuk  dicerna  (Sektiana,  2008).  Mikroalga ini  banyak  dimanfaatkan  sebagai  sumber pakan karena mengandung protein, karbohidrat,  dan  asam  lemaknya  yang cukup  tinggi  untuk  pertumbuhan  beberapa jenis larva udang (Sutomo, 2005). Thalassiosira sp.  memiliki  kandungan nutrisi  berupa  protein  21,85  -  37%,  lemak 2,41 - 10%, karbohidrat 17 - 21% (Erlina et al ., 2004).
Pakan  alami  selanjutnya  yang digunakan adalah dari golongan zooplankton  yaitu Artemia sp. Artemia sp. merupakan  salah  satu  pakan  alami  yang baik bagi larva karena memiliki kandungan nutrien tinggi dan mudah dicerna oleh larva udang, dapat menetas dengan cepat, ukuran
relatif  kecil,  dan  pergerakan  lambat  serta dapat hidup pada kepadatan tinggi (Gustrifandi,  2011;  Le et  al .,  2018). Kandungan  nutrien  dalam Artemia sp. meliputi protein sebanyak 52,76%, karbohidrat  15,4%,  lemak  4,87%,  air 10,86%  dan  abu  11.26%  (Marihati et  al ., 2013).  Pakan  dengan  kandungan  nutrisi tinggi dan ukuran sesuai bukaan mulut larva akan dapat meningkatkan pertumbuhan dan kelulushidupan (Herawati et al ., 2014). Jenis  pakan  buatan  yang  diberikan pada  larva  berupa  pakan  dalam  bentuk serbuk/tepung  ( powder ).  Hal  ini  mengacu pada SNI 7311 : 2009 bahwa pakan buatan yang  biasa  diberikan  untuk  larva  udang vannamei  adalah  pakan  dalam  bentuk bubuk,  cair  dan flake (lempeng  tipis) dengan  ukuran  partikel  sesuai  dengan stadianya.  Pemberian  pakan  yang  sesuai kebutuhan akan memacu pertumbuhan dan perkembangan  udang  vannamei  secara optimal  sehingga  produktivitasnya  bisa ditingkatkan.  Kebutuhan  nutrisi  sebagian besar  ikan  atau  udang  berasal  dari  sumber protein  atau  asam  amino  esensial  (Prawira et al ., 2014).

## 3.4.2. Penyediaan Pakan Alami
Bibit  murni  alga  yang  digunakan berasal  dari  BBRBLPP  Gondol,  Bali. Penyediaan pakan alami dilakukan melalui dua  tahapan  kultur  yaitu  kultur  alga  skala laboratorium  dan  kultur alga  skala  massal. Proses  kultur  alga  skala  laboratorium dilakukan  pada  ruangan  tertutup  dan berpendingan  (suhu  ±20°C)  dengan  tujuan agar  suhu  selalu  terkendali  dan  mencegah kontaminasi dari lingkungan luar. Ruangan kultur dipasang lampu TL berdaya 38 watt dengan tujuan agar proses fotosintesis dapat terjadi.  Media  kultur  muni  alga  yang digunakan meliputi wadah erlenmeyer agar (EA), test tube dan Erlenmeyer pure culture (EPC).  Adapun  media  kultur  plastik  yang digunakan  menggunakan  lastik  PE  ukuran 36  cm  ×  52  cm  yang  diisi  air  laut  dengan volume  10  L  dan  diaerasi.  Tahapan  kultur
Vol. 20 No. 2, Hlm. 105 – 115, Desember 2022
14
alga skala laboratorium selengkapnya pada Gambar 1.
Gambar 1. Tahapan Kultur Alga Skala Laboratorium
Produksi alga skala massal dilakukan dengan penebaran bibit pada bak alga sebanyak 1-2% volume air media (± 80 L  bibit)  atau  berasal  dari  8  kantong  kultur plastik. Alga berumur 1 hari (DOC 1) diberi Epyzime AGP  sebanyak  5  ppm  yang berfungsi sebagai penyusun dinding sel alga sehingga kandungan nutrisi alga bertambah.  Pemberian  pupuk  dan  vitamin juga dilakukan baik pada tahap kultur skala laboratorium  maupun  massal.  Hal  ini dilakukan  untuk  mengganti  sel-sel  yang rusak,  mempercepat  proses  pertumbuhan alga  serta  menambah  jumlah  sel  dalam proses pertumbuhan. Pemanenan alga skala massal dilakukan setelah dua hari penebaran bibit yang dilakukan dengan cara mentransfer  alga  dari  bak  skala  massal  ke bak  pemeliharaan  larva  menggunakan pompa.
Kultur  artemia  dilakukan  pada hatching  tank berisi  500  L  air  laut  dan diaerasi  kuat.  Air  laut  yang  digunakan bersuhu  28-30 ° C  dengan  salinitas  30  ppt dan pH 8-8,5. Telur artemia terlebih dahulu direndam  pada  15  L  air  tawar  dan didiamkan  selama  2  jam.  Telur  artemia yang  akan  dikultur  merupakan  telur  yang tenggelam  saat  direndam,  sedangkan  telur yang mengapung akan dibuang. Telur yang dikultur  selanjutnya  ditebar  pada hatching tank dengan kepadatan 1 sampai 1,5 g/L air media  kultur.  Kultur  artemia  berlangsung selama  18-24  jam  kemudian  dilakukan pemanenan.  Artemia  yang  sudah  dipanen selanjutnya dilakukan dipping menggunakan  larutan  formalin  dengan dosis  0,01  ppm  selama  10  detik  kemudian dimasukkan  kedalam  ember  berisi  air  laut dan diaerasi untuk digunakan sebagai pakan pada pemeliharaan larva.

## 3.4.3. Pemberian Pakan
Pakan  alga  mulai  diberikan  pada stadia nauplii (N5-6)  untuk  menyediakan pakan cadangan dalam media pemeliharaan.  Frekuensi  pemberian  alga dilakukan  dua  kali  dalam  satu  hari  yaitu pada  pukul  09.00  dan  15.00  WITA. Pemberian  pakan  alga  dilakukan  dengan cara mentransfer alga menggunakan pompa dari  bak  kultur  massal  kedalam  bak pemeliharaan  larva.    Penentuan  dosis  atau jumlah  pakan  alga  dilakukan  dengan pengambilan sampel dari sisa alga pada bak larva  dan  bak  kultur  massal,  dari  sampel tersebut  diambil  sebanyak  1  mL  untuk dilakukan  perhitungan  jumlah  sel  alga (Tabel 2). Adapun perhitungan volume alga yang  diberikan  dilakukan    dengan  rumus sebagai berikut:

## Volume Alga
=
Standar Pemberian Alga − Sisa Alga Kepadatan Alga Massal − Standar Pemberian Alga ×  Volume Air Bak http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/chanos2
Tabel  2.  Standar  Pemberian  Alga  Pada Pemeliharaan  Larva  di Hatchery PT.  STP Bali
Stadia Chaetocheros sp. (sel/mL) Thalassiosira sp. (sel/mL) N 40.000 10.000 Z 1 80.000 20.000 Z 12 100.000 25.000 Z 2 100.000 25.000 Z 23 120.000 30.000 Z 3 120.000 30.000 ZM 120.000 30.000 M 1 60.000 15.000 M 12 50.000 12.500 M 2 40.000 10.000 M 23 40.000 10.000 M 3 30.000 7.500
Pemberian  artemia  dilakukan  pada stadia mysis -2  hingga  panen  dengan frekuensi  pemberian  sebanyak  tiga  kali dalam sehari yaitu pada pukul 09.00, 15.00
dan 21.00 WITA. Pemberian pakan artemia sudah sesuai dengan SNI 7311 : 2009 yang menyatakan  bahwa  frekuensi  pemberian pakan  artemia  pada  larva  udang  dilakukan sebanyak  3-6  kali  sehari.  Dosis  pemberian artemia  didasarkan  pada  standar  jumlah pemberian nauplii artemia  per  satu  juta ekor.  Artemia  yang  diberikan  pada  stadia mysis perlu  dibekukan  terlebih  dahulu, karena  pada  stadia  ini  larva  belum  dapat mengejar  makanan.  Pada  stadia  larva, udang  memiliki  keterbatasan  gerak  serta ukuran  bukaan  mulut  yang  sangat  kecil sehingga pemilihan jenis dan ukuran pakan sangatlah penting (Suriadnyani et al . 2007).
Pembekuan artemia dilakukan selama 8-12 jam.  Pemberian  artemia  dilakukan  dengan disebar secara merata menggunakan gayung pakan,  sedangkan  artemia  beku  harus diencerkan terlebih dahulu dengan air tawar agar  mudah  ditebar  pada  larva  udang vanname.  Standar  dan  dosis  pemberian pakan artemia yang diberikan selangkapnya dapat dilihat pada Tabel 3.
Tabel 3. Standar dan Dosis Pemberian Pakan Artemia sp.
No Stadia Standar Pemberian (%) Pemberian per satu juta benur (g) Total estimasi pemberian (g) 1. M1 2,5 75 135 2. M2 3,5 105 178,5 3.. M3 5 150 247,5 4. PL1 8 240 396 5. PL2 10 300 480 6. PL3 10 300 450 7. PL4 9 270 378 8. PL5 8 240 336 9. PL6 8 240 336 10. PL7 8 240 324 11. PL8 8 240 324 12. PL9 7 210 273 13. PL10 7 210 252
Frekuensi  pemberian  pakan  buatan pada  larva  udang  vanname  dilakukan sebanyak  delapan  kali  dalam  sehari  yaitu pukul  07.00,  11.00,  13.00,  17.00,  19.00, 23.00, 01.00, dan 05.00 WITA. Pemberian pakan buatan dilakukan menggunakan auto
feeder yang diisi dengan air tawar sebanyak 10-15  liter  sebagai  pencampur  pakan. Adapun dosis pemberian pakan per satu juta benur  dalam  satu  siklus  dapat  dilihat  pada Tabel 4.
Vol. 20 No. 2, Hlm. 105 – 115, Desember 2022
14
Tabel 4. Dosis Pemberian Pakan Buatan Per
Satu Juta Benur No  Stadia Jenis Pakan Buatan Pemberian per satu juta benur (g) 1. Z1 Mix 1 35 2. Z1 Mix 1 70 3.. Z2 Mix 1 105 4. Z3 Mix 1 140 5. M1 Mix 2 210 6. M2 Mix 2 245 7. M3 Mix 2 280 8. MPL Mix 2 & 3 350 9. PL1 Mix 3 430 10. PL2 Mix 3 525 11. PL3 Mix 3 525 12. PL4 Mix 4 525 13. PL5 Mix 4 570 14. PL6 Mix 4 570 15. PL7 Mix 4 570 16. PL8 Mix 5 570 17. PL9 Mix 5 640 18.  PL10 Mix 5 640

## 3.5. Monitoring Pemeliharaan Larva
Hasil  pengamatan  perkembangan larva  menunjukkan  bahwa  selama  masa pemeliharaan  larva  teramati  berkembang dengan  optimal  baik  secara  morfologi maupun waktu perkembangannya. Pengamatan  pada  stadia zoea -1  teramati memiliki bentuk badan pipih serta karapaks dan alat pencernaan makanan tampak jelas dengan  proses  perubahan  dari  naupius  ke fase  zoea  umumnya  36-40  jam  dari  telur menetas.  Pengamatan  pada  stadia zoea -2 teramati  memiliki  bentuk  mata  bertangkai dan  pada  stadia zoea -3  teramati  sepasang uropod mulai  berkembang.  Stadia zoea merupakan titik kritis dalam perkembangan larva  udang  vannamekarena  sangat  rentan terhadap  perubahan  dan  infeksi  pathogen (Pérez-Morales et  al., 2017).  Pengamatan pada  stadia mysis -1  teramati  bentuk  badan sudah nampak seperti udang dewasa namun masih belum terlihat adanya kaki renang.
Gambar 2. Perkembangan Stadia Larva Udang Vanname
Pengamatan  pada  stadia mysis -2 teramati  tunas  kaki  renang  mulai  nampak namun belum beruas-ruas serta pada stadia
mysis -3  teramati  adanya  kaki  renang  yang bertambah  panjang.  Pengamatan  pada stadia post  larva teramati  bentuk  larva
http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/chanos2 14
sudah  sepenuhnya  menyerupai  udang dewasa.  Hal  ini  sesuai  dengan  pendapat Wyban  &  Sweeney  (1991),  stadia post larva memilki kesamaan morfologi dengan udang dewasa dengan rerata panjang sekitar 4,5  mm  serta  pola  pergerakannya  berubah ditandai dengan kemampuan berenang yang lebih baik karena perkembangan dan fungsi pleopod sudah  optimal.  Hasil  pengamatan terhadap perkembangan larva selengkapnya dapat dilihat pada Gambar 3.
Hasil  pengamatan  kelangsungan hidup  larva  diketahui  bahwa  terdapat penuruan  populasi pada  tiap stadia perkembangan  larva.  Penuruan  ini  salah
satunya  disebabkan  oleh  kemampuan adaptasi larva pada stadia nauplius terhadap perubahan lingkungan dan proses transportasi  sehingga  menakibatkan  stress dan penurunan nafsu makan (Sunaryo et al .,
2018).  Namun  demikian  jumlah  populasi larva  pada  akhir  masa  pemeliharaan  yaitu ekor  PL-10  teramati  sebanyak  1.200.000 dari  total  penebaran  awal  sebanyak 2.000.000  ekor  atau  sebesar  60%.  Nilai kelangsungan  hidup  ini  masih  tergolong dalam kondisi  yang optimal, dimana  nilai kelangsungan hidup minimal yang dipersyaratkan adalah 30% (SNI
7311:2019).
Gambar 4. Hasil Pengamatan Kelangsungan Hidup Larva Udang Vanname
Kelangsungan  hidup  larva  selama masa  pemeliharaan  ini  juga  ditopang  oleh pengelolaan  pakan  yang  tepat,  baik  dari aspek jenis, kualitas maupun kuantitas. Hal tersebut  sesuai  dengan  Purba  (2012),  yang mengemukakan  bahwa  pemberian  pakan yang berkualitas dalam jumlah yang cukup akan  memperkecil  persentase  kematian larva  udang.  Selain  itu  penggunaan  pakan alami dan pakan buatan pada pemeliharaan larva  udang  juga  memberi  pengaruh terhadap  kecukupan  kebutuah    nutrien untuk  pertumbuhan  dan  kelangsungan hidup,  dimana  semakin  tinggi  tingkatan stadia  pertumbuhan  larva  maka  kebutuhan akan nutrien pakan juga semakin meningkat.  Nengsih  (2015),  menyatakan
bahwa  kandungan  nutrisi  dalam  pakan sangat mempengaruhi tingkat kelulushidupan larva udang vannamei. Kontrol kualitas air dilakukan setiap 1-3  hari  sekali  mulai  dari  DOC-3  (stadia zoea 2) sampai dengan panen. Pengamatan kualitas  air  meliputi  suhu,  salinitas,  DO, pH,  dan  ammonia.  Berdasarkan  hasil pengukuran  kualitas  air  menunjukkan bahwa kualitas air pada pemeliharaan induk dan larva masih berada pada kisaran normal dimana nilai suhu pada kisaran 29,6-31,8 ° C, salinitas pada kisaran 28-29,5 ppt, nilai DO pada  kisaran  4,9-5,4  mg/L,  nilai  pH  pada kisaran  7,8-8,1  serta  nilai  ammonia  pada kisaran  0-0,25  ppm.  Kisaran  nilai  kualitas air  ini  masih  termasuk  dalam  kategori
0 0,5 1 1,5 2 2,5 N Z1 Z2 Z3 M1 M2 M3 PL1 PL2 PL3 PL4 PL5 PL6 PL7 PL8 PL9 PL10
Po p u la si La v ra Ud a n g (ju ta ek o r)

## Stadia Larva Udang
Vol. 20 No. 2, Hlm. 105 – 115, Desember 2022
normal  yaitu  kondisi  yang  masih  dapat ditolelir  oleh  larva  udang  vanname  sesuai dengan SNI 7311:2009. Pada pemeliharaan larva  kualitas  air  sangat  penting  untuk diperhatikan  karena  merupakan  salah  satu faktor yang mempengaruhi tingkat kelangsungan  hidup  larva  udang  vaname dimana kualitas  air yang baik pada media pemeliharaan  akan  mendukung  proses metabolisme dalam proses fisiologi (Purba, 2012).

## IV. KESIMPULAN
Berdasarkan  hasil  penelitian  ini, kesimpulan yang dapat diambil diantaranya adalah  aplikasi  pakan  alami  dan  buatan pada  pemeliharaan  larva  udang  vanname mendukung perkembangan stadia larva dan tingkat kelangsungan hidup larva.
Pengamatan terhadap perkembangan stadia larva udang vanname teramati berkembang secara normal pada tiap stadianya.
Pengamatan  terhadap  kelangsungan  hidup udang  vanname  hingga  akhir  masa pemeliharaan diperoleh hasil nilai kelangsungan hidup PL-10 sebesar 60%.

## DAFTAR PUSTAKA
Chanratchakool,  P.,  F.  Corsin  and  M. Briggs.  2005.  Better  Management Practices  (BMP)  Manual  for  Black Tiger  Shrimp  ( Penaues  monodon ) Hatcheries  in  Vietnam.  NACA,
SUMA and THUY SAN. 59 hal.
Elovaara  A.  K.  2001.  Practical  technology for  intensive  commercial  shrimp production united states of America. Shrimp Farming Manual. 4(1):100.
Erlina,  A.,  Amini,  S.,  Endrawati,  H.,  dan Zainuri,  M.  2004.  Kajian  Nutritif Phytoplankton  Pakan  Alami  Pada Sistem  Kultivasi  Massal.  Jurnal
Ilmu Kelautan, Vol.9 No.4 Gustrifandi, H., 2011. Pengaruh Perbedaan Padat  Penampungan  dan  Dosis Pakan Alami Terhadap
Pertumbuhan  Larva  Udang  Windu
( Penaeus  monodon Fab.).  Jurnal
Ilmiah  Perikanan  dan  Kelautan.
3(2):241-247. DOI: doi.org/10.20473/jipk.v3i2.11613
Hendrajat,  E.  M.,  dan  Suryanto,  H.  2007.
Budidaya  Udang  Vannamei  Pola Tradisional  Plus  di  Kabupaten Maros  Sulawesi  Selatan.  Jurnal
Media Akuakultur 2(2) : 67–70
Herawati, V.N., Johanes, H., & Ocky, K.R.,
2014. Nutritional Content of Artemia  sp.  Fed  with Chaetoceros calcitrans and Skeletonema costatum .  HAYATI  Journal  of Biosciences.  21(4):166-172.  DOI: doi.org/10.4308/hjb.21.4.166
Hidayat.  K.  W.,  I.  A.  Nabilah.,  S. Nurazizah.,  dan  B.  I.  Gunawan. 2019.  Pembesaran  Udang  Vaname (Litopenaeus  Vannamei)  Di  PT. Dewi Laut Aquaculture Garut Jawa Barat.  Jurnal  of  Aquaculture  And Fish Health. 8(3):123-128 Le,  T.H.,  Hoa,  N.V.,  Sorgeloos,  P.  &  Van Stappen, G., 2018. Artemia feeds: a review of brine shrimp production in the Mekong Delta, Vietnam. Reviews  in  Aquaculture,  11(4):1– 18. DOI: 10.1111/raq.12285Marihati et  al ., 2013.
Nengsih,  E.  A.,  2015.  Pengaruh  aplikasi probiotik  terhadap  kualitas  air  dan pertumbuhan  udang Litopenaeus vannamei .  JURNAL  BIOSAINS, 1(1): 11–16.
Perdana,  P.A.,  Lumbessy,  S.Y.,  Setyono, B.D.H.  2021.  Pengkayaan  Pakan Alami Artemia sp. dengan
Chaetoceros sp. pada Budidaya Post Larva Udang Vaname ( Litopenaeus vannamei ).  Journal  of  Marine Research, 1 (2) : 252-258
Pérez-Morales, A., Band-Schmidt, C. J., &
Martínez-Díaz, S. F. (2017).
Mortality  on  zoea  stage  of  the pacific  white  shrimp  Litopenaeus vannamei  caused  by  Cochlodinium
http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/chanos2 14
polykrikoides  (Dinophyceae)  and Chattonella Spp. (Raphidophyceae). Marine Biology, 164 (3) Prawira,  M.  A.,  Sudaryobo,  A.,  & Rachmawati,  D.  2014.  Penggantian
Tepung Ikan Dengan Tepung Kepala Lele Dalam Pakan Terhadap Efisiensi  Pemanfaatan  Pakan  dan Pertumbuhan Juvenil Udang Vannamei ( Litopenaeus  vannamei ). Journal of Aquaculture Management and Technology Vol. 3 No. 4
Purba, C.Y., 2012. Performa Pertumbuhan, Kelulushidupan,  dan  Kandungan Nutrisi  Larva  Udang  Vaname ( Litopenaeus  Vannamei )  Melalui Pemberian  Pakan  Artemia  Produk Lokal  yang  Diperkaya  dengan  Sel
Diatom.  Journal  of  Aquaculture Management and Technology, 1(1):102– 115 Putri, T., Supono, Putri, B. 2020. Pengaruh Jenis  Pakan  Buatan  Dan  Alami Terhadap Pertumbuhan dan
Kelangsungan  Hidup  Larva  Udang Vaname  ( Litopenaeus  Vannamei ). Jurnal  Akuakultur  Rawa  Indonesia, 8 (2) : 176-192 Sektiana,  S.  P.  (2008).  Pengembangan Medium Untuk Kultur Semi Massal
Diatom  Laut Chaetoceros  gracilis
Schutt.  Tesis.  Pascasarjana.  IPB Bogor Standar  Nasional  Indonesia  (SNI).  2009. Produksi  Benih  Udang  Vannamei ( Litopenaeus vannamei ) Kelas
Benih Sebar. SNI 7311:2009
Subaidah, S., Susetyo P., Mizab A., Tabah I.,  Gede  S.,  Detrich  N.  Dan
Cahyaningsih.  2006.  Pembenihan Udang Vannamei ( Litopenaeus vannamei ).  Balai  Budidaya  Air
Payau Situbondo. Situbondo Suriadnyani.  N.N.,  Kadek.  M.,  dan  Tati A.N.  2007.  Pemeliharaan  Larva Udang  Vannamei  ( Litoppenaeus vannamei ) dengan Pemberian Fitoplankton  yang  Berbeda.  Jurnal Penelitian dan Rekayasa Perikanan. Balai Besar Riset Perikanan Budidaya Laut Gondol. Bali Sutomo. 2005. Kultur Tiga Jenis Mikroalga ( Tetraselmis sp, Chlorella sp,  dan Chaetoceros gracilis ) dan Pengaruh
Kepadatan Awal Terhadap Pertumbuhan Chaetoceros  gracilis di Laboratorium. Jurnal Oseanologi dan Limnologi di Indonesia Wyban, J. A. dan J.N. Sweeney. 1991. Intensive Shrimp Production Technology . Honolulu, Hawaii, USA
Received : 2022-11-4
Reviewed :2022-12-19 Accepted : 2022-12-30