ISSN: 1410-8917 e-ISSN: 2597-9914
Jurnal Kimia Sains dan Aplikasi 21 (4) (2018): 187 – 192

## Jurnal Kimia Sains dan Aplikasi
Journal of Scientific and Applied Chemistry
Journal homepage: http://ejournal.undip.ac.id/index.php/ksa
Isolation of Flavonoid Compounds from Eceng Gondok ( Eichhornia crassipes ) and Antioxidant Tests with DPPH (1,1-Diphenyl-2- Picrylhydrazyl) Method
Kautsar Elvira a , Enny Fachriyah a,* , Dewi Kusrini a
a Chemistry Department, Faculty of Sciences and Mathematics, Diponegoro University, Jalan Prof. Soedarto, Tembalang, Semarang
* Corresponding author: enny.fachriyah@live.undip.ac.id
https://doi.org/10.14710/jksa.21.4.187-192
A r t i c l e   I n fo

## A b s t r a c t
Article history:
Received: 20 August 2018
Revised: 28 October 2018 Accepted: 28 October 2018 Online: 31 October 2018
Keywords:
Eichhornia crassipes ; Eceng gondok;
Flavonoids; Antioxidant
The research had been conducted of the isolation of flavonoid compounds from water hyacinth  plants  ( Eichhornia  crassipes )  and  antioxidant  activity  test  by  DPPH  (1,1- diphenyl-2-picrylhydrazyl)  method.  This  research  starts  from  maceration  of  water hyacinth  with  ethanol  solvent.  Ethanol  extract  was  hydrolyzed  with  HCl.  Flavonoid separation  is  carried  out  by  column  chromatography  and  preparative  thin  layer chromatography. The obtained isolates were analyzed by UV vis spectrophotometer and FTIR  spectrophotometer.  Antioxidant  activity  was  carried  out  by  DPPH  method. Flavonoid isolates were obtained as heavy as 4.5 mg (0.006%). The results of the analysis of flavonoid isolates A4a with UV vis spectrophotometer appear at a wavelength of 368 nm (band I) and 260 nm (band II). The results of the analysis with FTIR shown that the isolates had functional groups O-H, aliphatic C-H, CH3, C =O, aromatic C = C, and C-O ether,  it  was  suspected  that  flavonoid  isolates  had  a  basic  structure  of  quercetin  7- methyl ether compounds. The results of antioxidant activity test of flavonoid isolates shown IC 50 price of 254.66 mg / L

## A b s t r a k
Kata Kunci: Eichhornia crassipes ; Eceng gondok;
Flavonoid; Antioksidan
Telah  dilakukan  penelitian  tentang  isolasi  senyawa  flavonoid  dari  tanaman  eceng gondok ( Eichhornia crassipes ) dan uji aktivitas antioksidan dengan metode DPPH (1,1- diphenyl-2-picrylhydrazyl). Penelitian ini dimulai dari maserasi serbuk tanaman eceng gondok  dengan  etanol.  Ekstrak  etanol  dihidrolisis  dengan  HCl.  Pemisahan  flavonoid dengan kromatografi kolom dan klt preparatif. Isolat yang diperoleh dianalisis dengan spektrofotometer  UV-  vis  dan  FTIR.  Aktivitas  antioksidan  dilakukan  dengan  metode DPPH. Isolat flavonoid diperoleh seberat 4,5 mg (0,006%). Hasil analisis isolat flavonoid A4a dengan UV vis muncul pada panjang gelombang 368 nm (pita I) dan 260 nm (pita II). Hasil analisis dengan FTIR, menunjukkan isolat mempunyai gugus fungsi O-H, C-H alifatik, CH3,C=O, C=C aromatik, dan C-O eter, diduga isolat flavonoid memiliki struktur dasar senyawa kuersetin 7 – metil eter . Isolat Flavonoid mempunyai IC 50 sebesar 254,66 mg/L.

## 1. Pendahuluan
Eceng  gondok  ( Eichhornia  crassipes )  dikenal  oleh masyarakat luas sebagai tanaman gulma. Eceng gondok
memiliki  pertumbuhan  yang  begitu  cepat  sehingga menutupi permukaan air [1] . Oleh karena itu tantangan bagi  manusia  untuk  mengubah  eceng  gondok  yang berstatus sebagai penggangu menjadi sumber daya yang
berguna  dan  memiliki  nilai  ekonomi  yang  tinggi. Penelitian  terdahulu  melaporkan  bahwa  pada  eceng gondok  mengandung  metabolit  sekunder  seperti  tanin, saponin,  flavonoid,  steroid,  terpenoid,  fenol,  kuinon, antrakuinon  dan  alkaloid  [2].  Metabolit  sekunder  dari eceng  gondok dilaporkan mempunyai  aktivitas antioksidan [3], antitumor [4], penyembuh luka [5], anti- inflamasi  [6],  anti  penuaan  [7],  antialga  [8],  antijamur [9], antibakteri [10].
Senyawa golongan flavonoid dilaporkan mempunyai aktivitas sebagai antioksidan [11, 12]. Penelitian lain [13, 14] melaporkan bahwa jenis flavonoid yang terdapat pada tumbuhan  eceng  gondok  ( Eichhornia  crassipes )  adalah luteolin,  apigenin,  trisin,  krisoeriol,  kaempferol, azaeletin, gossipetin, orientin, kuersetin, dan isovitexin menggunakan  metode  KLT  berdasarkan  penampak bercak ammonia pada ekstrak air. Oleh karena itu, pada penelitian  ini  akan  dilakukan  isolasi  senyawa  flavonoid serta identifikasi senyawa flavonoid dari tanaman eceng gondok ( Eichhornia crassipes )
menggunakan spektrofotometer UV vis dan FT IR serta menguji aktivitas antioksidan menggunakan metode DPPH.

## 2. Metode Penelitian

## 2.1. Bahan dan alat.
Bahan  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  yaitu tanaman  eceng  gondok,  pelarut  dengan  derajat  teknis berupa  n-heksana,  etanol,  etil  asetat,  pelarut  dengan derajat  p.a  berupa  etanol  (Merck),  etil  asetat  (Merck), kloroform  (Merck),  n-heksana  (Merck),  asam  klorida 36% (Merck), besi (III) klorida (Merck), asam sulfat 98% (Merck), diklorometan (Merck), amil alkohol, anhidrida asetat,  natrium  hidroksida,  serbuk  Mg,  pereaksi Dragendorf,  pereaksi  Mayer,  aquadest,  amoniak  pekat, HCl  2  N,  plat  silika  gel  60  GF254,  Silika  60  ,  dan  DPPH (1,1-diphenyl-1-picrylhydrazyl)  (Sigma-Aldrich)  dan kuersetin (Merck).
Alat yang digunakan dalam penelitian ini terdiri alat gelas yang umum digunakan, blender,maserator, kertas saring,  seperangkat  alat  untuk  KLT,  lampu  detektor  UV 254  nm  dan  365  nm  (CAMAG  UV  Cabinet  4),  ,  rotary vaccum  evaporator  (Buchi-B480),  satu  set  alat kromatografi  cair  vakum,  satu  set  alat  kromatografi kolom gravitasi, neraca analitik (Kern-870), spektrofotometer  UV-Vis  (Shimadzu  UV-  1280),  FTIR (Perkin Elmer 10.4.00).

## 2.2. Preparasi dan Penapisan fitokimia
Sampel  penelitian  berupa  tanaman  eceng  gondok yang  diperoleh  dari  daerah  Tembalang,  Semarang. Tanaman  eceng  gondok  yang  diperoleh  dibersihkan, dikeringkan  dan  dihaluskan  menjadi  serbuk  dan  diuji penapisan fitokimia [15].

## 2.3. Isolasi Flavonoid
Sebanyak 2100 gram serbuk tanaman eceng gondok dimaserasi  dengan  etanol  96%  hingga  jernih.  Ekstrak yang diperoleh kemudian dievaporasi sampai  mendapat ekstrak etanol dan ditimbang. Ekstrak etanol dilarutkan dalam  etanol  selanjutnya  dilakukan  penghilangan
klorofil dengan menambahkan akuades (1:1), didiamkan selama 24 jam, lalu disaring. Filtrat diekstraksi dengan n- heksana.Fraksi  etanol-air  dihidrolisis  dengan  HCl  2  N selama 1 jam pada suhu 85°C [16]. Fraksi hasil hidrolisis difraksinasi dengan  etil  asetat  hingga  didapatkan  fraksi etil  asetat  kemudian  dievaporasi  untuk  menghilangkan pelarutnya lalu ditimbang.

## 2.4. Pemisahan Flavonoid
Fraksi  etil  asetat  sebanyak  1,73  gram  dilakukan pemisahan  flavonoid  dengan  kromatografi  kolom gravitasi menggunakan fasa diam silika gel 60 dan fasa gerak  berupa  campuran  etil  asetat:  kloroform  :  butanol (8:7:2).  Eluat-eluat  yang  dihasilkan  dari  kolom ditampung setiap 15 mL dalam botol vial. Masing-masing botol  vial  dianalisis  dengan  KLT.  Eluat-eluat  yang menghasilkan  pola  noda  yang  sama  digabungkan menjadi  fraksi-fraksi  besar  (fraksi  besar  A,B,C,dan  D) kemudian  dilakukan  analisis  flavonoid  menggunakan metode KLT dengan penambahan penampak bercak uap amoniak.  Fraksi  positif  flavonoid  dilakukan  pemisahan dengan KLT preparatif menggunakan fasa diam plat silika gel 60 F254 ukuran 20 cm x20 cm, ketebalan 0,5mm-2,0 mm  dan  fasa  gerak  berupa  campuran  n-heksana  :  etil asetat  :  butanol  (9:5:1)  hingga  didapatkan  isolat flavonoid.  Isolat  flavonoid  yang  diperoleh  diuji kemurniannya dengan menggunakan KLT berbagai eluen tunggal  dan  campuran  serta  KLT  dua  dimensi  dengan eluen campuran.

## 2.5. Identifikasi Struktur
Isolat  flavonoid  yang  telah  murni  diidentifikasi strukturnya menggunakan spektrofoto meter UV-Vis dan FTIR.

## 2.6. Uji Aktiviitas Antioksidan
Fraksi  A  hasil  kolom  dilakukan  uji  aktivitas antioksidan  dengan  menggunakan  metode  KLT.  Plat disemprot  dengan  larutan  DPPH  0,1  mM.  Pengujian aktivitas  antioksidan  terhadap  fraksi  A  hasil  kolom dilanjutkan  dengan  metode  DPPH  dan  digunakan kuersetin  sebagai  pembanding.  Fraksi  A  hasil  kolom dibuat  variasi  konsentrasi  20,  40,  60,  80  dan  100  ppm. Masing-masing  konsentrasi  dari  isolat  flavonoid sebanyak  0,2  mL  dimasukkan  ke  dalam  botol  vial, kemudian  ditambahkan  3,8  mL  larutan  DPPH  0,1  mM. Campuran dihomogenkan dan dibiarkan selama 30 menit dalam  ruangan  gelap,  kemudian  diukur  absorbansinya pada  panjang  gelombang  515  nm.  Perlakuan  yang  sama dilakukan terhadap kuersetin dengan variasi konsentrasi (5, 10,15, 20 dan 25 ppm). Nilai absorbansi dari larutan uji dengan berbagai konsentrasi digunakan untuk menghitung  aktivitas  peredaman  radikal  DPPH  (% inhibisi) dengan menggunakan persamaan berikut [20]
% inhibisi = 𝐀𝐤𝐨𝐧𝐭𝐫𝐨𝐥(𝐃𝐏𝐏𝐇)−𝐀𝐬𝐚𝐦𝐩𝐞𝐥 𝐀𝐤𝐨𝐧𝐭𝐫𝐨𝐥 (𝐃𝐏𝐏𝐇) x 100%
Besarnya  aktivitas  antioksidan  ditentukan  dengan nilai IC 50 yang dihitung dengan menggunakan persamaan yang diperoleh dari kurva regresi linier dengan sumbu x adalah  konsentrasi  larutan  uji,  sedangkan  sumbu  y adalah persentase aktivitas peredaman radikal DPPH (%
inhibisi). Nilai IC 50 merupakan konsentrasi sampel untuk dapat meredam 50% aktivitas radikal DPPH.

## 3. Hasil dan Pembahasan
Penapisan  fitokimia  bertujuan  untuk  mengetahui kandungan senyawa metabolit sekunder yang terkandung  dalam  tanaman  eceng  gondok.  Hasil penapisan fitokimia dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1.Hasil uji penapisan fitokimia serbuk, ekstrak etanol, dan fraksi etil asetat tanaman eceng gondok
Senyawa Metabolit Sekunder Bahan Serbuk Ekstrak Etanol Fraksi Etil Asetat Flavonoid + + + Alkaloid + Steroid + Triterpenoid - Saponin + Tanin + Kuinon -
Hasil  penapisan  fitokimia  yang  diperoleh  mirip dengan  yang  dilaporkan  oleh  Lata  dan  Dubey  [2]  serta Wijaya dkk. [3],tumbuhan  eceng  gondok  mengandung steroid, flavonoid, alkaloid, triterpenoid, saponin, kuinon dan tanin.

## 3.1. Isolasi Flavonoid
Serbuk tanaman eceng gondok sebanyak 2100 gram setelah dimaserasi dengan pelarut etanol 96%, disaring dan  dievaporasi  hingga  diperoleh  ekstrak  kental  etanol berwarna coklat kehitaman pekat sebanyak 96,66 gram (4,6%).  Ekstrak  kental  etanol  setelah  dihilangkan klorofilnya  menghasilkan  fraksi  etanol-air,  kemudian difraksinasi menggunakan n-heksana. Fraksi etanol-air hasil  fraksinasi  dihidrolisis  dengan  metode  refluks menggunakan  HCl  2  N  yang  bertujuan  untuk  memutus ikatan  O-glikosida  pada  kerangka  flavonoid,  sehingga terbentuk  flavonoid  bebas  dan  gula.  Flavonoid  bebas dalam  campuran  dapat  diambil  dengan  fraksinasi menggunakan  etil  asetat.  Fraksi  etil  asetat  diuapkan untuk menghilangkan pelarut dan didapatkan fraksi etil asetat sebanyak 1,73 gram(0,082%).

## 3.2. Pemisahan Flavonoid dan Uji Kemurnian
Pemisahan  flavonoid  pada  fraksi  etil  asetat dilakukan  menggunakan  kromatografi  kolom  gravitasi dengan fasa gerak etil asetat: kloroform : butanol (8:7:2) dan fasa diam berupa silika gel 60. Eluat yang dihasilkan sebanyak  49  botol  vial.  Masing-masing  botol  vial tersebut dianalisis menggunakan KLT dengan fasa gerak etil  asetat:  kloroform  :  butanol  (8:7:2).  Hasil  KLT  yang mempunyai pola noda yang sama digabung dan diperoleh 4  fraksi  besar  yaitu  fraksi  A,B,C,  dan  D  seperti  yang ditunjukkan pada gambar 2 dan tabel 2.
Gambar 1.Profil KLT fraksi A hasil kromatografi kolom gravitasi dengan fasa gerak etil asetat: kloroform : butanol (8:7:2) pada UV λ 365nm
Tabel 2 Profil KLT penggabungan hasil kromatografi kolom gravitasi berdasarkan pola noda yang sama dengan eluen etilasetat:kloroform:butanol (8:7:2) pada UV λ 365 nm No. Fraksi Jumlah Vial Wujud dan Warna Fraksi 1 A 1-10 Minyak (Coklat Pekat) 2 B 11-29 Minyak (Coklat Pekat) 3 C 30-40 Minyak (Kuning Kecoklatan) 4 D 41-49 Minyak (Kuning kecoklatan)
Fraksi A, B, C dan D menunjukkan positif flavonoid setelah  diberi  penampak  bercak  uap  amoniak,  namun fraksi A memberikan hasil flavonoid yang lebih dominan dan  terlihat  jelas  dibandingkan  fraksi-fraksi  lainnya. Fraksi  A  selanjutnya  dipisahkan  menggunakan  metode KLT  preparatif  dengan  fasa  diam  plat  silika  gel60  F254 ukuran  20  cm  x  20  cm,  ketebalan  0,5  mm-2,0 mm dan fasa  gerak  berupa  campuran  n-heksana  :  etil  asetat  : butanol (9:5:1). Hasil KLT preparatif fraksi A ditampilkan pada gambar 2.
Gambar 2.Profil KLT preparatif fraksi A dengan fasa gerak n-heksana : etil asetat : butanol (9:5:1) padaUV λ 365 nm
Pita  A4  selanjutnya  dikerok,  dilarutkan  dalam  etil asetat,  dan  disaring  hingga  didapat  isolat  flavonoid  A4. Isolat  flavonoid  A4  diuji  kemurniannya  dengan  KLT menggunakan  campuran  eluen  n-heksana  :  etil  asetat  : butanol (9:5:1) disajikan pada gambar 3.
Gambar 3.Profil KLT isolat A4 dengan fasa gerak n- heksana : etil asetat : butanol (9:5:1) padaUV λ 365 nm. A sebelum penguapan B sesudah penguapan dengan amoniak
Pita A4 kemudian dilakukan KLT preparatif kembali untuk  memisahkan  noda  noda  tersebut.  Hasil  KLT preparatif pita A4 disajikan pada gambar 4.
Gambar 4. Profil KLT preparatif pita A4 dengan fasa gerak n-heksana : etil asetat : butanol (9:5:1) padaUV λ 365 nm
Pita  A4a  selanjutnya  dikerok,  dilarutkan  dalam metanol,  dan  disaring  hingga  didapat  isolat  flavonoid A4a. Isolat flavonoid A4a diuji kemurniannya dengan KLT menggunakan berbagai eluen disajikan pada gambar 5.
Gambar 5. Profil KLT isolat flavonoid A4a isolat flavonoid A4a pada uji kemurnian dengan berbagai fasa gerak pada UV λ 365nm.
Keterangan:  Fasa  gerak  (A)  =  etil  asetat,  (B)  = kloroform,  (C)  =  butanol,  (D)  =  n-heksana:etil asetat:butanol (9:5:1), (E) = butanol kloroform (1:4), (F) = kloroform + uap amoniak
Hasil KLT preparatif isolat flavonoid A4a dilakukan KLT dua dimensi seperti disajikan pada gambar 6.
Gambar 6. Profil KLT dua dimensi isolat flavonoid A4a pada UV λ 365 nm. Keterangan : 1. Eluen Butanol : kloroform (1:9) 2. Eluen Butanol : kloroform (1:4)
Pada  gambar  5  dan  6,  terlihat  hasil  KLT menunjukkan noda tunggal. Hal ini diduga bahwa isolat flavonoid  A4a  telah  murni.Noda  pada  KLT  dua  dimensi berwarna  flouresensi  hijau  kekuningan  setelah  diberi penampak  bercak  uap  amoniak  yang  diduga  isolat flavonoid  A4a  termasuk  ke  dalam  flavonoid  jenis flavonol,  sesuai  dengan  tabel  penafsiran  warna  bercak dari  segi  struktur  flavonoid  [17].  Isolat  flavonoid  A4a diuapkan dan diperoleh isolat flavonoid sebanyak 0,0045 gram.

## 3.3. Identifikasi Struktur Flavonoid
Isolat  flavonoid  A4a  dilarutkan  dalam  metanol, kemudian  dianalisis  menggunakan  spektrofotometer UV-Vis  dan  diperoleh  spektrum  yang  disajikan  pada gambar 7.
Gambar 7. Spektrum UV-Vis isolat flavonoid A4a dalam metanol
Isolat  flavonoid  A4a  dianalisis  menggunakan spektrofotometer  UV-Vis  menghasilkan  dua  serapan panjang gelombang, yaitu pita I (368 nm) dan pita II (260 nm).  Pita  I  pada  flavonoid  menunjukkan  absorbsi  pada cincin  B  sinamoil  dan  pita  II  adalah  absorbsi  cincin  A benzoil.  Hasil  analisis  isolat  A4a  dengan  UV  vis memberikan  puncak  pada  pita  I  yang  relatif  sangat rendah (368 nm) dibandingkan pita II (256 nm), karena konsentrasi  yang  sangat  kecil.  Hal  ini  karena keterbatasan isolat yang diperoleh. Menurut [17] dilihat dari spektrum yang diperoleh diduga isolat flavonoid A4a memiliki  struktur  dasar  senyawa  flavonol,  karena flavonol memiliki rentang serapan pita I (350 – 380 nm)
A B
A B C D E F 1 2 Rf = 0,80
Jurnal Kimia Sains dan Aplikasi 21 (4) (2018): 187 – 192
dan  pita  II  (250 – 280 nm).  Hal  ini  sesuai  dengan  hasil identifikasi  awal  menggunakan  KLT  dengan  diberi  uap amoniak.  Menurut  penelitian  [13,  14],  jenis  flavonoid yang  terdapat  pada  tanaman  eceng  gondok  ( Eichhornia crassipes )  adalah  luteolin,  apigenin,  trisin,  krisoeriol, kaempferol,  azaeletin,  gossipetin,  orientin,  kuersetin, dan  isovitexin  menggunakan  metode  KLT  dan kromatografi  kertas.  Peneliti  lain  [18]  telah  melakukan penelitian  mengenai  kuersetin  7-metil  eter  yang dianalisis  menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis. Kuersetin 7-metil eter memiliki panjang gelombang pada pita  I  (372  nm)  dan  pita  II  (256  nm).  Spektrum  isolat flavonoid  A4a  mempunyai  kemiripan  dengan  spektrum UV  vis  dari  kuersetin-7-metil  eter  yang  dilakukan  oleh Ferraro dkk. [18].
Analisis  selanjutnya  adalah  dengan  menggunakan spektroskopi  FTIR.  Hasil  analisis  isolat  A4a  dengan spektrofootometer FT IR disajikan pada gambar 8
Gambar 8. Spektrum FTIR isolat flavonoid A4a
Dari hasil analisis isolat flavonoid A4a memiliki pita serapan  pada  bilangan  gelombang  3425,58  cm -1 menunjukkan  adanya  vibrasi  ulur  O-H  yang  dapat membentuk ikatan hydrogen.Pita serapan pada bilangan gelombang 3040,10  cm -1 dan 1651,01  cm -1 menunjukkan vibrasi  ulur  =C-H  dan  vibrasi  ulur  C=C  aromatik  yang menunjukkan  adanya  struktur  benzena.  Pita  serapan pada  bilangan  gelombang  1743,65  cm -1 menunjukkan adanya  vibrasi  ulur  C=O,  pita  serapan  pada  bilangan gelombang 1411,89 cm -1 menunjukkanvibrasi tekuk CH3, pita  serapan  pada  bilangan  gelombang  1111,00  cm -1 menunjukkan vibrasi ulur C-O eter (jembatan O) [19].

## 3.4. Uji Aktivitas Antioksidan
Hasil  aktivitas  antioksidan  fraksi  A  hasil  kolom menunjukkan  perubahan  warna  dari  ungu  menjadi kuning pada noda yang ditunjukkan pada gambar 9.
Gambar 9. Hasil uji aktivitas fraksi A hasil kolom pada sinar tampak
Penentuan aktivitas antioksidan dilanjutkan dengan menggunakan metode
DPPH (1,1-difenil-2-
pikrilhidrazil)  terhadap  fraksi  A  hasil  kolom  dan kuersetin  sebagai  pembanding.  Flavonoid  akan menghambat  aktivitas  radikal  bebas  dari  DPPH  karena memiliki  kemampuan  untuk  mendonorkan  radikal protonnya  yang  akan  menyebabkan  terjadinya  reduksi membentuk DPPH nonradikal. Reaksi peredaman radikal bebas oleh flavonoid yang mungkin terjadi dapat dilihat pada gambar 10.
Gambar 10. Reaksi peredaman radikal bebas oleh flavonoid [20]
Parameter uji aktivitas antioksidan adalah Inhibition Concentration  (IC 50 )  yaitu  konsentrasi  suatu  zat antioksidan  yang  menyebabkan  50%  DPPH  kehilangan karakter  radikal  atau  konsentrasi  suatu  zat  antioksidan yang  memberikan  persentase  penghambatan  sebesar 50%. Harga IC 50 dapat dilihat pada tabel 3.
Tabel 3. Harga IC 50 fraksi A hasil kolom dan kuersetin pada panjang gelombang maksimum 515 nm
Sampel IC 50 (mg/L) Fraksi A 254,66 Kuersetin 23,2419
Hasil  uji  aktivitas antioksidan  menunjukkan bahwa fraksi A hasil kolom memiliki aktivitas antioksidan yang lebih rendah dari kuersetin. Harga IC 50 yang baik yaitu di bawah 200 mg/L [20], oleh karena itu dapat disimpulkan bahwa  fraksi  A  hasil  kolom  memiliki  aktivitas antioksidan, meskipun kurang kuat. Tingginya aktivitas antioksidan  pada  kuersetin  disebabkan  kuersetin  yang digunakan merupakan senyawa murni yang mempunyai kemampuan lebih besar untuk mendonorkan protonnya. Gugus hidroksil sangat berperan dalam meredam radikal bebas dengan cara mendonorkan protonnya.
Jurnal Kimia Sains dan Aplikasi 21 (4) (2018): 187 – 192 192

## 4. Kesimpulan
Isolat  flavonoid  dari  tanaman  eceng  gondok ( Eichhornia  crassipes )  diperoleh  seberat  0,0045  gram (0,006  %).  Identifikasi  isolat  flavonoidA4a  tanaman eceng  gondok  menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis dan  FTIR  menunjukkan  bahwa  isolat  tersebut  diduga merupakan flavonoid golongan flavonol jenis kuersetin- 7-metil  eter.  Fraksi  A  hasil  kolom  fraksi  etil  asetat tanaman  eceng  gondok  memiliki  aktivitas  antioksidan ditunjukkan oleh harga IC 50 sebesar 254,66mg/L.

## 5. Daftar Pustaka
[1]  Ahmed  M.  Aboul-Enein,  Ahmed  M.  Al-Abd,  Emad Shalaby,  Faten  Abul-Ela,  Amr  A.  Nasr-Allah,  Ali  M. Mahmoud, Hany A. El-Shemy, Eichhornia crassipes (Mart)  solms:  from  water  parasite  to  potential medicinal  remedy, Plant  signaling  &  behavior ,  6,  6,
(2011) 834-836
http://dx.doi.org/10.4161/psb.6.6.15166
[2]  N Lata, Venapani Dubey, Preliminary phytochemical screening of Eichhornia crassipes: the world’s worst aquatic  weed, Journal  of  pharmacy  Research ,  3,  6,
(2010) 1240-1242
[3]  Dianty  Wijaya,  Putri  Purnama  Yanti,  Muhammad Rizal, Screening Fitokimia dan Aktivitas Antioksidan Daun  Eceng  Gondok  (Eichhornia  crassipes), Jurnal Kimia VALENSI , 1, 1, (2015) 65-69
[4]  Huma  Ali,  Meha  Patel,  N  Ganesh,  Janak  Ahi,  The world’s  worst  aquatic  plant  as  a  safe  cancer medicine-Antitumor  activity  on  melanoma  induced mouse  by  Eichhornia  crassipes:  in  vivo  studies, Journal of Pharmacy Research , 2, 8, (2009) 1365-1366
[5]  Huma Ali, N Lata, Janak Ahi, N Ganesh, Evaluation of wound-healing  activity  of  Eichornia  crassipes:  A novel  approach, Drug  Invention  Today ,  2,  3,  (2010) 212-214
[6]  P  Jayanthi,  P  Lalitha,  R  Sujitha,  A  Thamaraiselvi, Anti-inflammatory  activity  of  the  various  solvent extracts  of  Eichhornia  crassipes  (Mart.)  Solms, International  Journal  of  PharmTech  Research ,  5,  2,
(2013) 641-644
[7]  Pottail  Lalitha,  Jayanthi  Ponnusamy,  Antiaging activity  of  the  skin  cream  containing  ethyl  acetate extract  of  Eichhornia  crassipes  (Mart.)  Solms, International  Journal  of  PharmTech  Research ,  6,  1,
(2014) 29-34
[8]  Sanaa  MM  Shanab,  Emad  A  Shalaby,  David  A Lightfoot, Hany A El-Shemy, Allelopathic effects of water  hyacinth [Eichhornia  crassipes], PLoS  One ,  5, 10, (2010) e13200
[9]  Varaprasad  Bobbarala, Prasanth Kumar Katikala, K. Chandrasekhar  Naidu,  Somasekhar  Penumajji, Antifungal Activity of Selected Plant Extracts against Phytopathogenic  Fungi  Aspergillus  niger  F2723, Indian Journal of Science and Technology , 2, 4, (2009)
87-90
[10] Mahavir Joshi, Sandeep Kaur, In Vitro Evaluation of Antimicrobial Activity and Phytochemical Analysis of Calotropis Procera, Eichhornia Crassipes and Datura Innoxia  Leaves., Asian  Journal  of  Pharmacy  Clinical Research , 6, Supplemen 5, (2013) 25-28
[11]  G.E.  Trease,  W.C.  Evans,  A  Text-Book  of Pharmacognosy, Bailliere Tindall Ltd., London, 1989.
[12] Narayana K. Raj, Reddy M. Sripal, M. R. Chaluvadi, D. R. Krishna,
Bioflavonoids classification, pharmacological, biochemical effects and therapeutic potential, Indian Journal of Pharmacology , 33, 1, (2001) 2-16
[13] B.  L.  Nyananyo,  A.  H.  Gijo,  E.  N.  Ogamba,  The Physico-chemistry  and  Distribution  of  Water Hyacinth (Eichhornia cressipes) on the river Nun in the  Niger  Nelta, Journal  of  Applied  Sciences  and Environmental  Management ,  11,  3,  (2007)  133-137
http://dx.doi.org/10.4314/jasem.v11i3.55158 [14] P.  Lalitha,  S.  K.  Sripathi,  P.  Jayanthi,  Secondary metabolites of Eichhornia crassipes
(Waterhyacinth):  a  review  (1949  to  2011), Nat  Prod Commun , 7, 9, (2012) 1249-1256 [15] Norman R. Farnsworth, Biological and phytochemical  screening  of  plants, Journal  of Pharmaceutical  Sciences ,  55,  3,  (1966)  225-276 http://dx.doi.org/10.1002/jps.2600550302
[16] Safira  Safira,  Enny  Fachriyah,  Dewi  Kusrini,  Isolasi dan Identifikasi Senyawa Flavonoid dari Ekstrak Etil Asetat  Rimpang  Bengle  (Zingiber  cassumunar Roxb.), Jurnal Kimia Sains dan Aplikasi , 15, 1, (2012) 3 http://dx.doi.org/10.14710/jksa.15.1.36-38
[17] KR Markham, Cara Mengidentifikasi Flavonoid, ITB, Bandung, 1988.
[18] Graciela  Ferraro,  Filip  Rosana,  María  A  del  Pero, Norma  Basualdo,  Rodolfo  Mendoza,  Ileana  García, Flavonoids of Lotus tenuis (Waldst. & Kit.) as markers of populations growing in soils of different saline and hydrologic  conditions, Journal  of  the  Brazilian Chemical Society , 21, 9, (2010) 1739-1745
[19] Robert  M  Silverstein,  G  Clayton  Bassler,  Terence  C Morrill,  Spectroscopic  identification  of  organic compounds, Wiley, New York , (1981) 196
[20] Philip  Molyneux,  The  use  of  the  stable  free  radical diphenylpicrylhydrazyl  (DPPH)  for  estimating antioxidant activity, Songklanakarin Journal of Science and Technology , 26, 2, (2004) 211-219