Irnayuli R. Sitepu et al.

## Pemanfaatan Bakteri Rhizoplane dan Fungi Mikoriza Arbuskula
(FMA) untuk Meningkatkan Pertumbuhan Semai Jelutung ( Dyera polyphylla Miq. Steenis.)
Utilization of Rhizoplane Bacteria and Arbuscular Fungi Mycorrhizal (AFM) to Improve Growth of Jelutong Seedling ( Dyera polyphylla Miq. Steenis.
Irnayuli R. Sitepu 1 , Irdika Mansur 2 & Rifa’ Atunnisa 2
1 Laboratorium Mikrobiologi Hutan, Puslitbang Hutan dan Konservasi Alam, Departemen Kehutanan Bogor
2 Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan IPB

## ABSTRACT
Nontimber forest  products (NTFPs) represent  sources  of income  from tropical  forest, but  some  NTFP  species  have decreased in population and become endangered due to overexploitation. There is increasing concern that the planting stock  of  Dyera  polyphylla  is  not  sufficient  to  sustain  the  yield  of  NFTPs.  The  beneficial  root  colonizing  rhizosphere bacteria,  the  so-called  plant  growth-promoting rhizobacteria have  been  known  to  carry  out  many important  ecosystem processes, such as those involved in the nutrient cycling and/or seedling establishment. The roots of most plant species associate  with  certain  soil  fungi  and  establish  what  are  known  as  mycorrhiza.  The  objective  of  this  study  was  to determine  the  effect  of  two  arbuscular  miycorrhizal  (AMF)  fungi,  Glomus  sp.,  Gigaspora  sp.  and  thirteen  strains  of rhizoplane bacteria (CK32, FL.13.2.1, JW1, JW6, JW9, JW13, JW14, CK26, CK4, JW3a, SB, NT, CR.R1), on the early growth of D. polyphylla, under greenhouse condition. Percentage of AMF colonization, plant growth, and nitrogen (N) and phosphorus (P) concentration were measured after 150 days of planting. The results showed that the percentage of AM colonization of D. polyphylla was 100%. Colonization by Glomus sp. significanly increased plant height by 18,95% and diameter by 16,16% compared to those non AMF. Combination of bacterial and AMF inoculant between JW13 dan Glomus  sp.  increased  shoot  weight  by  as  much  as  36,28%  from  control  and  increased  N  concentration  by  69,59% compared to those of non inoculate a seedlings. Combination of JW1 and Gigaspora sp. increased P concentration by as much  as  42,05%  compared  to  those  of  non  inoculate  seedlings.  Despite  the  difficulty  of  selecting  a  multifunctional microbial  consortia,  appropriate  microbial  combinations  can  be  recommended  for  a  biotechnological  input  related to improvement of plant performance.
Keywords: AM fungi, biofertilizer, Dyera polyphylla, NTFP, PGPR

## PENDAHULUAN
Jelutung ( Dyera polyphylla Miq. Steenis.) merupakan  jenis  pohon  dari  famili  Apocynaceae.  Kayu jelutung  termasuk  dalam kelas awet  V,  kayunya  ringan dan lunak sehingga mudah dikerjakan. Digunakan untuk papan  lukis,  pensil,  korek  api,  bingkai,  bahan  ukiran, mebel  dan  getahnya  sebagai  bahan  baku  pembuatan permen  karet  (Whitmore,  1972;  Martawijaya et  al., 1981).
Seiring  berjalannya  waktu,  potensi  jenis  jelutung  di hutan-hutan  alam  diduga  semakin  berkurang.  Hal  ini disebabkan oleh penebangan pohon untuk dimanfaatkan kayunya,  selain  itu  dikhawatirkan  karena  banyaknya pohon yang rusak  atau mati akibat praktek penyadapan getah  yang  tidak  sesuai  dengan  aturan.  Sementara  itu permudaan alam jenis jelutung ini sangat jarang terjadi, sedangkan  budidayanya  belum  pernah  dilakukan  untuk menjaga  kelestarian  dan  meningkatkan  produksi  baik getah  maupun  kayu  jelutung.  Oleh  karena  itu  usaha budidaya pohon jelutung perlu dilakukan. Sebagai tahap awal  dari  upaya  tersebut  adalah  pengadaan  bibit  yang berkualitas.
Nitrogen  adalah  elemen  penting  bagi  tanaman. Nitrogen merupakan unsur yang paling biasa digunakan dalam  program  pemupukan,  karena  jumlahnya  yang diperlukan  banyak  (sebagai  salah  satu  unsur  makro), mobilitasnya dalam sistem tinggi, dan proporsi nitrogen total  yang  tersedia  dalam  tanah  untuk  digunakan tumbuhan  kecil.  Oleh  karena  itu,  dalam  prakteknya, nitrogen  yang  dibutuhkan  tanaman  banyak  terpenuhi oleh  pupuk  anorganik.  Namun  pupuk  anorganik  dapat memberikan  dampak  negatif  terhadap  lingkungan  jika terakumulasi secara terus menerus sehingga penggunaan biofertilizer sangat  dianjurkan  untuk  mengurangi dampak negatif dari penggunaan pupuk anorganik.
Salah  satu  aplikasi  dari  penggunaan biofertilizer adalah  aplikasi  dari  PGPR  ( Plant  Growth  Promoting Rhizobacteria )  pada  rizosfir  tanaman.  PGPR  dapat diartikan  sebagai  keanekaragaman  bakteri  yang  sangat besar pada  tanah dimana  keberadaan bakteri-bakteri ini dapat menstimulasi pertumbuhan tanaman yang tumbuh pada  tanah  tersebut (Werner  2003). Mikoriza merupakan  hubungan  yang  saling  menguntungkan antara cendawan dengan tumbuhan tinggi.
Berdasarkan penelitian Sitepu (2007) telah
diidentifikasi  sejumlah  bakteri  penambat  nitrogen

## JURNAL SILVIKULTUR TROPIKA
Vol. 01 No. 01 Desember 2010, Hal. 18 – 23 ISSN: 2086-8227
nonsimbiotik  dari  hasil  screening  PGPR  pada  tanaman Dipterocarpaceae. Dari beberapa bakteri fiksasi nitrogen nonsimbiotik ini perlu dilakukan pengujian lebih lanjut, sehingga keefektifan dari isolat-isolat bakteri yang telah ditemukan tersebut dapat diketahui dengan jelas.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Oktober 2008 -  Mei  2009,  bertempat  di  Laboratorium  Mikrobiologi dan  Rumah  Kaca  Pusat  Penelitian  dan  Pengembangan Kehutanan Bogor.
Persiapan  media  semai  dan  media  sapih. Media semai  yang  digunakan  untuk  benih  jelutung  adalah campuran  tanah,  sekam,  dan  zeolit    dengan perbandingan 2 : 1 : 1. Sebelum media digunakan, tanah dan  pasir  harus  diayak  terlebih  dahulu  dengan menggunakan ayakan dengan tujuan untuk mendapatkan  butiran  yang  halus  dan  memisahkan kotoran dari media tersebut.
Persiapan  semai. Sebelum  disemaikan  buah jelutung dijemur kurang lebih selam 2 hari sampai buah merekah dan bijinya tampak. Setelah itu biji dibersihkan dari sayapnya dan ditabur dalam media kecambah yang telah  dipersiapkan.  Bak  kecambah  disiram  secukupnya sesuai  dengan  kebutuhan  untuk  tetap  menjaga kelembaban media perakaran.
Perbanyakan  isolat  bakteri .  Sebanyak  13  isolat bakteri  diperbanyak  dengan  menggunakan  media Nutrient  Broth  yang  dibuat  berkadar  10%.  Kemudian Erlenmeyer yang berisi media Nutrient Broth dibungkus bagian  lehernya  dengan  alumunium  foil  untuk disterilisasi  dengan  cara  dimasukkan  dalam autoclave dengan suhu 121°C dan tekanan 1 atm selama 20 menit. isolat  bakteri  yang sudah dimurnikan diinokulasikan ke dalam  media  Nutrient  Broth  dengan  menggunakan jarum ose. Kegiatan ini dilakukan di dalam Laminar Air Flow  Cabinet untuk  menghindari  kontaminasi.  Media yang  sudah  diinokulasi  bakteri  kemudian  diletakkan  di atas shaker 80 rpm selama 48 jam. Pertumbuhan bakteri dapat  diketahui  dengan  melihat  keruhnya  media Nutrient Broth pada Erlenmeyer.
Pembuatan larutan isolat bakteri . Media cair hasil perbanyakan  bakteri  kemudian  dituangkan  ke  dalam tabung Centrifuges .  Setelah  dituang,  media  cair  hasil perbanyakan diendapkan dengan cara di centrifuge agar bakteri mengendap di dasar tabung. Tabung dicentrifuges  dengan  kecepatan  4000  rpm  selama  10 menit. Centrifuge dilakukan  sebanyak  tiga  kali. Centrifuges pertama  semua  media  cair  sebanyak  50  ml dimasukkan dalam tabung sentrifuge. Untuk menyamakan berat, kerena  dalam  pemindahan kedalam tabung  dimungkinkan  terjadi  tumpah,  dapat  ditambah
dengan  larutan  NaCl  0,7%.  Setelah  10  menit  pertama cairan  yang  ada  dalam  tabung  dibuang  sehingga  hanya ada  endapan  isolat  bakteri  saja.  Setelah  itu  pada Centrifuges kedua  endapan  bakteri  dicampur  dengan larutan NaCl 0,7 % sebanyak 100 ml. Hal ini dilakukan sampai  pada  Ceentrifuges  ketiga.  Setelah Centrifuge ketiga selesai larutan NaCl dibuang, kemudian endapan isolat bakteri dilarutkan pada air steril sebanyak 100 ml dan  dipindahkan  pada  tabung  lain.  Perlu  dipastikan bahwa  endapan  bakteri  larut  semua  dalam  air  steril. Kemudian  untuk  mengikat  bakteri  larutan  diberi gelangam sebanyak 0,3 gr dan diaduk sampai rata.
Inokulasi mikoriza dan inokulasi bakteri. Setelah inokulan  mikoriza  dan  bakteri  siap  diinokulasikan, terlebih  dahulu  dilakukan  penyiapan  media  sapih,  dan penyapihan  tanaman  jelutung.  Tanaman  jelutung  yang telah  dicelupkan  ke  dalam  air  steril  kemudian  sesuai dengan  perlakuan  yang  diberi  bakteri,  dicelupkan  pada larutan  bakteri  yang  telah  disiapkan  selama  30  menit. Perlu  dipastikan  akar  dari  tanaman  jelutung  terendam larutan  bakteri.  Setelah  30  menit  tanaman  jelutung dipindahkan  dalam polybag yang  telah  diberi  media sapih  sesuai  dengan  label  perlakuan  pada polybag . Tanaman jelutung yang akan diberi perlakuan mikoriza, dimasukkan  kedalam polybag yang  telah  diisi  media. Kemudian  pada  lubang  yang  telah  ditempatkan tanaman, diberi inokulum fungi mikoriza sesuai dengan jenis perlakuannya sebanyak 5 gr kemudian akar dalam lubang ditutup dengan media sapih dan dipadatkan.
Pemeliharaan. Untuk  pemeliharaan  dilakukan penyiraman  dengan  air  biasa  sebanyak  dua  kali  dalam sehari (pagi dan sore) tergantung kondisi media.
Pengamatan  parameter  dan  pengumpulan  data. Dalam pengamatan, parameter yang diamati adalah : (1) tinggi  tanaman  (2)  diameter  tanaman  (3)  pengukuran berat  kering  akar  dan  pucuk    (4)  perhitungan  IMB (Indeks  Mutu  Bibit)  (5)  persentase  infeksi  akar  FMA (6)  analisis  jaringan  (N,  P).  Untuk  pengamatan  tinggi dan diameter dilakukan di rumah kaca, sedangkan untuk pengukuran  biomassa  dilakukan  di  laboratorium mikrobiologi  Puslitbang  Kehutanan,  sedangkan analisis jaringan  unsur  N  dan  P  dilakukan  di  laboratorium departemen Ilmu Tanah dan Sumber Daya Lahan IPB.
Rancangan percobaan . Rancangan percobaan yang digunakan dalam penelitian ini adalah Rancangan Acak Kelompok (RAK) dengan 42 perlakuan, masing-masing perlakuan  diulang  sebanyak  sepuluh  kali.  Dengan demikian, jumlah total polybag pengamatan seluruhnya berjumlah 420 polybag .
Irnayuli R. Sitepu et al.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Hasil
Tabel 1.  Rekapitulasi hasil analisis sidik ragam pertumbuhan semai jelutung
Perameter F Hitung Bakteri p FMA p Interaksi p Tinggi (cm) 1,17 tn 12,23 * 1,35 tn Diameter (cm) 0,54 tn 10,85 * 1,3 tn Berat Kering Akar (gr) 1,38 tn 5,65 * 1,18 tn Berat Kering Pucuk (gr) 2,72 * 3,68 * 1,76 * Rasio pucuk-akar 3,52 * 15,83 * 0,1825 tn Indeks Mutu Bibit 0,51 tn 1,05 tn 1,12 tn CFU 3206,2 * Unsur N (mg/tanaman) 2,3 * 7,27 * 3,72 * Unsur P (mg/tanaman) 1,62 tn 7,15 * 3,45 *
Keterangan: tn : tidak nyata; * : nyata;  (p<0,05), pada selang kepercayaan 95%

## Tinggi Semai
Tabel 2.  Uji  lanjut  Duncan  Pertambahan  tinggi  semai
jelutung Perlakuan Rata-rata (cm) Peningkatan  terhadap Perlakuan  tanpa  FMA (%) Glomus sp. (G1) 5,71 a 18,95 Gigaspora sp. (G2) 5,36 a 11,67 Tanpa FMA 4,80 b 0
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.

## Diameter Semai
Tabel 3.  Uji  lanjut  Duncan  Pertambahan  diameter semai jelutung Perlakuan Rata-rata (cm) Peningkatan terhadap  Perlakuan tanpa FMA (%) Glomus sp. (G1) 0,137 a 16,16 Gigaspora sp. (G2) 0,136 a 13,33 Tanpa FMA 0,120 b 0
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.

## Berat Kering Akar

## Tabel 4.  Uji lanjut Duncan berat kering akar
Perlakuan Rata-rata (cm) Peningkatan terhadap Perlakuan tanpa FMA (%) Glomus sp. (G1) 0,489 a 10,93 Gigaspora sp. (G2) 0,437 b -2,46 Tanpa FMA 0,448 b 0
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.

## Berat Kering Pucuk
Tabel 5.  Uji lanjut Duncan Berat Kering Pucuk Perlakuan Berat Kering Pucuk (gr) Peningkatan Terhadap Kontrol (%) JW13 G1 0,586 a 36,28 JW1 G2 0,559 ab 30,00 JW6 G2 0,473 abc 10,00 CR.R1 G2 0,472 abc 9,77 CK32 G2 0,467 abc 8,60 JW14 G2 0,462 abc 7,44 FL.13.2.1 G2 0,443 abc 3,02 JW1 G1 0,436 bc 1,40 K 0,430 bc 0,00 NT G1 0,409 bc -4,88 JW9 G2 0,408 bc -5,12 JW6 G1 0,406 bc -5,58 CK26 G2 0,405 bc -5,81 SB G1 0,394 c -8,37 CK4 G2 0,390 c -9,30 JW13 G2 0,387 c 10,00 CK26G1 0,384 c 10,70 FL13.2.1 G1 0,364 c 15,35 JW9 G1 0,355 c 17,44 NT G2 0,355 c 17,44 CK4 G1 0,354 c 17,67 JW14 G1 0,350 c 18,60 CR.R1G1 0,348 c 19,07 JW3aG2 0,346 c 19,53 SB G2 0,330 c 23,26 CK32 G1 0,328 c 23,72 JW3a G1 0,321 c 25,35
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.

## Rasio Pucuk Akar
Tabel 6.  Uji  lanjut  Duncan  rasio  pucuk  akar  semai jelutung Perlakuan Rata-rata Peningkatan terhadap Perlakuan tanpa bakteri (%) JW13 1,067 a 20,97 JW1 0,999 ab 13,26 FL13.2.1 CK4 K JW14 JW6 CK32 NT CK26 JW3a SB JW9 CR.R1 0,927 bc
0,923 bc 0,882 bcd
0,879 bcd
0,878 bcd
0,864 bcd
0,836 cd
0,817 cd
0,812 cd
0,808 cd
0,804 cd 0,762 d 5,1 4,64
0 -0,34 -0,45 -2,18 -5,21 -7,36 -7,93 -8,39 -8,84 -13,60
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.

## Tabel 7.  Uji lanjut Duncan rasio pucuk akar
Perlakuan Rata-rata Peningkatan terhadap
Perlakuan tanpa FMA (%) Glomus sp. (G1) 0,815 b -7,59 Gigaspora sp. (G2) 0,967 a 14,16 Tanpa FMA 0,847 b 0
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.

## Indeks Mutu Bibit.
Nilai Indeks  Mutu  Bibit  (IMB)  merupakan  hasil interaksi antar parameter pertumbuhan (Tinggi, Diameter, Berat  Kering Akar dan Berat  Kering Pucuk). Berdasarkan  hasil  analisis  sidik  ragam  (Tabel  1), perlakuan  inokulasi  FMA,  bakteri  dan  kombinasinya memberikan  pengaruh  tidak  nyata  terhadap  parameter IMB pada selang kepercayaan 95%.

## Persentase Infeksi Akar.
Pada  parameter  pengamatan  persentase  infeksi  akar tidak  dilakukan  analisis  sidik  ragam  karena  hasil  yang didapat  dari  seluruh  perlakuan  yang  diberikan  akar semai jelutung terkena infeksi mikoriza.

## Analisis Jaringan N
Tabel 8.  Uji  lanjut  Duncan ranalisis  jaringan  N  semai jelutung
Perlakuan Rata-rata (mg) Peningkatan Terhadap Kontrol (%) JW13 G1 1,12 a 69,59 JW1 G2 0,86 b 30,56 JW14 G2 0,80 bc 20,57 CK4 G2 0,75 bcd 13,16 NT G2 0,70 bcde 6,51 CR.R1 G2 0,70 bcde 5,14 CK32 G2 0,68 bcde 2,72

## Tabel 8. Lanjutan
Perlakuan Rata-rata (mg) Peningkatan Terhadap Kontrol (%) K 0,66 bcdef 0,00 JW6 G2 0,65 bcdef -1,66 CK26 G2 0,59 bcdefg -10,74 FL13.2.1 G2 0,56 cdefg -15,58 CK26 G1 0,55 cdefg -16,34 SB G1 0,53 cdefg -19,67 JW1 G1 0,53 cdefg -20,12 SB G2 0,52 cdefg -21,18 NT G1 0,52 cdefg -21,48 CK32 G1 0,49 defg -26,63 CK4 G1 0,48 defg -27,23 JW9 G2 0,46 defg -30,56 JW6 G1 0,46 defg -30,86 JW3a G2 0,44 efg -33,59 JW14 G1 0,43 efg -34,64 JW13 G2 0,41 efg -38,12 JW9 G1 0,40 efg -38,88 JW3a G1 0,40 efg -39,64 CR.R1 G1 0,36 fg -45,23 FL.13.2.1 G1 0,33 g -49,47
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.

## Analisis Jaringan P

## Tabel  9.  Uji lanjut Duncan analisis jaringan P
Perlakuan Rata-rata (mg) Peningkatan Terhadap Kontrol (%) JW1 G2 0,13 a 42,05 JW13 G1 0,11 ab 21,59 FL13.2.1 G2 0,10 abc 18,18 JW14 G2 0,10 abcd 13,64 CK32 G2 0,10 abcde 7,95 CK26 G2 0,09 abcdef 3,41 CK4 G2 0,09 abcdef 3,41 K 0,09 abcdef 0,00 JW6 G2 0,08 bcdefg -5,68 NT G2 0,07 bcdefgh -19,32 CK32 G1 0,07 bcdefgh -19,32 JW1 G1 0,07 bcdefgh -19,32 CR.R1 G2 0,07 bcdefgh -20,45 NT G1 0,07 bcdefgh -20,45 JW6 G1 0,07 bcdefgh -26,14 SB G1 0,06 bcdefgh -27,27 JW3a G2 0,06 cdefgh -27,27 JW3a G1 0,06 defgh -32,95 SB G2 0,06 defgh -32,95 CK26 G1 0,06 defgh -35,23 CK4 G1 0,06 efgh -35,23 JW9 G1 0,06 efgh -36,36 FL.13.2.1 G1 0,06 efgh -36,36 JW9 G2 0,05 efgh -39,77 CR.R1 G1 0,05 fgh -42,05
Keterangan  :  huruf  yang  berbeda  menunjukkan  pengaruh  yang berbeda  nyata  berdasarkan  uji  lanjut  Duncan  pada  selang kepercayaan 95%.
Irnayuli R. Sitepu et al.

## Pembahasan
Pengaruh  Inokulasi  Bakteri  terhadap  Infeksi Mikoriza  pada  Semai  Jelutung. Salah  satu  parameter untuk menentukan tingkat keberhasilan simbiosis antara FMA  dengan  tanaman  inang  adalah  adanya  persentase infeksi mikoriza. Berdasarkan hasil penelitian diketahui dari  seluruh  perlakuan  yang  diberikan,  menunjukkan adanya infeksi mikoriza pada akar  semai jelutung yang ditandai dengan adanya vesikula. Adanya vesikula tidak hanya  pada  perlakuan  mikoriza  saja  melainkan  pada perlakuan  tunggal  bakteri  dan  perlakuan  kontrol.  Oleh karena  itu  tidak  diperlukan  lagi  adanya  analisis  sidik ragam karena seluruh bagian akar terlihat adanya infeksi mikoriza.  Hal  ini  diduga  karena  media  sapih  yang digunakan  tidak  steril,  sehingga  memungkinkan mikroorganisme  lain  juga  terkandung  dalam  media tersebut.  Seperti  yang  disebutkan  bahwa  rizosfir merupakan zona tanah yang dipengaruhi akar dan dapat mempunyai  populasi  organisme  berlipat  ganda  lebih banyak  dibandingkan  dengan  tanah  yang  tidak terpengaruh akar (Vancura et al . 2000).
Selain  itu  penyiraman  yang  dilakukan  tidak menggunakan air steril sehingga dapat pula menyebabkan  adanya  kontaminasi.  Hal  ini  relevan dengan  penelitian  yang  dilakukan  oleh  Turjaman et al .(2006)  bahwa  kontrol  pada  semai Dyera  polyphlla juga  terinfeksi  oleh  FMA  yang  berasal  dari  jenis  yang indigenous.  Berdasarkan  dari  penelitian  Turjaman et al .(2006)  diketahui  bahwa  semai  jelutung  yang diinokulasi dengan FMA jenis Glomus clarum terinfeksi hampir  100%  yaitu  sebesar  93%,  sehingga  dapat diketahui  bahwa  semai  jelutung  memberikan  respon yang  bagus  jika  diinikulasi  dengan  FMA  jenis Glomus sp.
Pengaruh Inokulasi FMA, Bakteri dan Kombinasinya terhadap Pertumbuhan Semai Jelutung. Berdasarkan  hasil  penelitian,  respon  yang bervariasi  ditunjukkan  oleh  pengaruh  perlakuan terhadap  parameter  yang  diamati.  Secara  umum, perlakuan  mikoriza  dan  bakteri  memberikan  respon yang  baik  terhadap  parameter  pertumbuhan  semai jelutung.  Hal    ini  selaras  dengan  pernyataan  bahwa  di dalam  rizosfir  terjadi  berbagai  interaksi  sinergisme maupun  antagonisme.  Salah  satu  interaksi  di  dalam rizosfir yang mendapat perhatian adalah interaksi antara FMA  (simbiosis  obligat)  dengan  bakteri  yang  hidup bebas di rizosfir (Rhizobakteria) (Pujiyanto 2001). Dari pernyataan tersebut selaras dengan hasil penelitian yang diketahui bahwa interaksi antara FMA dan bakteri yang hidup  bebas  di  rizosfir  bersifat  sinergis,  ditunjukkan oleh  adanya  peningkatan  pertumbuhan  dari  semai jelutung.
Bukman  dan  Brady  (1969) dalam Suyono  (2003) menambahkan bahwa bakteri dapat membantu pertumbuhan  tanaman  tingkat  tinggi  dengan  baik, karena bakteri secara praktis dapat memegang monopoli tiga  buah  pokok  transformasi  enzim  yaitu  nitrifikasi, oksidasi  sulfur  dan  fiksasi  N.  Selain  itu  bakteri  dapat membantu  pertumbuhan  tanaman  diantaranya  dengan cara  membantu  penyediaan  unsur  hara  penting  bagi tanaman.  Disamping itu, terdapat beberapa bakteri yang merugikan tanaman inang. Hal ini diduga bahwa dalam
jumlah  banyak  nutrisi  yang  dihasilkan  oleh  tanaman inang,  dimanfaatkan    bakteri  untuk  pertumbuhannya. Bukman  dan  Brady  (1982) dalam Suyono  (2003) menyebutkan  bahwa  organisme  tanah  dapat  merugikan tanaman  tingkat  tinggi  diantaranya  melalui  persaingan untuk memperoleh hara yang tersedia. Organisme tanah biasanya  memperoleh  unsur  hara  lebih  dulu,  baru tanaman  tingkat  tinggi  dapat  mempergunakan  yang masih  tersisa.  Pelczar et  al .  (1986)  menambahkan bahwa bakteri tidak hanya bervariasi dalam persyaratan nutrisinya,  tetapi  juga  menunjukkan  respon  yang berbeda-beda terhadap kondisi fisik di dalam lingkungannya.  Untuk  berhasilnya  pembiakan  berbagai tipe  bakteri,  dibutuhkan  suatu  kombinasi  hara  serta lingkungan fisik yang sesuai.
Berdasarkan  hasil  penelitian,  interaksi  antara  FMA dengan bakteri memberikan respon yang beragam dalam mempengaruhi  pertumbuhan  semai  jelutung.  Dari  data yang  menyajikan  peningkatan  pertumbuhan  yang bernilai  negatif  terhadap  kontrol  menunjukkan  bahwa terjadi penurunan pertumbuhan sehingga dapat diartikan perlakuan  yang  diberikan  tidak  efektif.  Dengan demikian, dapat disimpulkan bahwa tidak semua bakteri mampu  bekerjasama  dengan  mikoriza.  Hal  ini  diduga bahwa  kinerja  bakteri  dengan  mikoriza  ada  yang bersifat  antagonis.  Hal  ini  diduga  karena  terjadi persaingan  dalam  mendapatkan  sumber nutrisi  diantara keduanya.  Sehingga,  sangat  memungkinkan  kombinasi keduanya  menghasilkan  respon  yang  lebih  rendah terhadap  kontrol.  Bukman  dan  Brady dalam Suyono (2003) menyatakan bahwa  disamping persaingan antara mikroorganisme  dan  tanaman  tingkat  tinggi  terdapat persaingan makanan yang hebat antara mikroorganisme itu sendiri.

## KESIMPULAN
Berdasarkan dari hasil penelitian, diketahui pemberian  tunggal  mikoriza  jenis Glomus sp.  maupun dengan  interaksinya  dengan  bakteri  JW13  secara signifikan  meningkatkan  pertumbuhan  semai  jelutung. Inokulasi  mikoriza  jenis Glomus sp.  meningkatkan pertumbuhan  tinggi  tanaman  sebesar  18,95%  dan pertambahan  diameter  sebesar  16,16%  dari  perlakuan tanpa  FMA. Perlakuan kombinasi  antara  bakteri  JW 13 dan Glomus sp.  meningkatkan  berat  kering  pucuk sebesar  36,28%  dan  meningkatkan  kandungan  unsur hara N sebesar 69,59% terhadap control. Selain itu juga ditemukan interaksi  mikoriza dan bakteri  jenis JW1G2, JW13G1,  JW14G2,  CK32G2  memberikan  pengaruh positif  terhadap  pertumbuhan  semai  jelutung  dan  dapat digunakan  sebagai  rekomendasi  dalam  aplikasi  pupuk hayati.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  menyampaikan  ucapan  terima  kasih  kepada Dr.  Ir.  Irdika  Mansur  selaku  pembimbing  pertama  dan Dr.  Irnayuli  R.  Sitepu  selaku  pembimbing  kedua. Penelitian  ini  didanai  oleh  APBN,  Departemen Kehutanan  dan  Grant-in-aid  for  scientific  research  A (no.  19255016)  to  Dr.  T.  Inoue  (Hokkaido  University,
Jepang).  Selain  itu  penghargaan  juga  diberikan  kepada Prof.  Dr.  Y.  Hashidoko  dari  Hokkaido  University, Jepang.

## DAFTAR PUSTAKA
Barea et  al .  1997.  Interaction  between  plant-growth- promoting rhizobacteria (PGPR), arbuscular mycorrhizal  fungi  and  Rhizobium  spp.  In  the rhizosphere  of Anthyllis  cytisoides ,  a  model  legume for revegatation in mediterranean semi-arid ecosystems. New Phytologist 136, 667-677.
Sitepu  I.  2007.  Screening  of  plant  growth-promoting rhizobacteria  from  Dipterocarpaceae plants growing in Indonesian tropical rain forest,  and investigations of  their  functions  on  seedling  growth  [disertasi]. Sapporo: Hokkaido University.
Pelczar  MJ  and  Chan  ECS.  1986. Dasar-Dasar Mikrobiologi (Terjemahan:  Hadioetomo,  R.S    dkk). Jakarta : UI Press.
Pujiyanto.  2001.  Pemanfaatan  Jasad  Mikro  Cendawan Mikoriza  dan  Bakteri  dalam  Sistem  Pertanian Berkelanjutan di Indonesia: Tinjauan dari Perspektif Falsafah Sains. Bogor: Program Pasca Sarjana IPB.
Suyono.  2003.  Pengaruh  Inokulasi  Bakteri  dan
Endomikoriza terhadap Pertumbuhan Sengon ( Paraserianthes  falcataria ).  [Skripsi].  Jurusan Manajemen Hutan Fakultas Kehutanan IPB.
Turjaman  M,  Tamai  Y,  Santoso  E.  2006.  Arbuscular mycorrhizal  fungi  increased  early  growth  of  two nontimber  forest  product  species Dyera  polyphylla and Aquilaria  filarial under  greenhouse  condition. Mycorrhiza 16:456-464.
Vancura  V,  Kunc  F.  2000. Soil  Microbial  Association . New  York:  Elsevier  Science  Publishing  Company Inc.
Whitmore  TC.  1972. Tree  Flora  of  Malaya .  Volume Two. Longman, London.
Werner.  2003. Plant  Surface  Microbiology .  Berlin: Springer.