## Community of Phytoplankton as Aquatic Quality Bioindicator in Teluk Melanau Waters Lemukutan Island West Kalimantan
( Komunitas Fitoplankton Sebagai Bioindikator Kualitas Perairan di Teluk Melanau Pulau Lemukutan Kalimantan Barat )
Zainal, Arie Antasari Kushadiwijayanto, Ikha Safitri*, Mega Sari Juane Sofiana
Program Studi Ilmu Kelautan, FMIPA, Universitas Tanjungpura Jl. Prof. Dr. H. Hadari Nawawi, Pontianak, Kalimantan Barat 78124, Indonesia *Corresponding author, e-mail: isafitri@marine.untan.ac.id
Manuscript received: 2 May 2023. Revision accepted: 23 May 2023.

## Abstract
Lemukutan  Island  has  the  potential  of  natural  resources  with  a  high  level  of  diversity,  including phytoplankton.  Lemukutan  Island  has  been  developed  as  a  marine  tourism  destination  and  other activities.  A  way  to  monitor  water  conditions  is  by  observing  physical,  chemical,  and  biological parameters.  This  study  aimed  to  determine  the  community  structure  of  phytoplankton  aa  s bioindicator  of  water  quality  and  analyze  the  correlation  of  environmental  parameters  to  the abundance  of  phytoplankton  in  Teluk  Melanau,  Lemukutan  Island.  Determination  of  sampling stations  using  a  purposive  sampling  method.  Phytoplankton  identification,  abundance,  biological index,  and  measurement  of  environmental  parameters  were  carried  out  in  this  study.  The  results showed  that  the  phytoplankton  community  consisted  of  77  genera  and Bacillariophyceae has  the highest  percentage  contribution  (90.44%).  The  most  common  genera  were Cocconeis,  Nitzchia, Synedra ,  and Chaetoceros .  The  abundance  of  phytoplankton  ranged  from  2-1521  ind/L.  The biological  index  showed  that  Teluk  Melanau  was  in  an  unpolluted  condition.  Environmental parameters  were  still  in  the  optimal  range  for  the  growth  of  phytoplankton.  The  abundance  of phytoplankton is very strongly correlated with salinity, DO, nitrate, and phosphate, strongly correlated with pH and very weakly correlated with brightness, temperature, and current velocity. Keywords: Community structure, phytoplankton, bioindicator, Lemukutan Island.

## Abstrak
Perairan pulau Lemukutan memiliki potensi sumberdaya alam, termasuk fitoplankton. Pada saat ini, pulau  Lemukutan  telah  dikembangkan  sebagai  destinasi  wisata  bahari  dan  berbagai  aktivitas lainnya. Aktivitas tersebut dapat memberikan dampak terhadap kualitas perairan. Salah satu cara melakukan monitoring kondisi perairan yaitu dengan cara pengamatan parameter fisika, kimia, dan biologi.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  struktur  komunitas  fitoplankton  sebagai bioindikator kualitas perairan dan menganalisis korelasi parameter lingkungan terhadap kelimpahan fitoplankton di Perairan Teluk Melanau, Pulau Lemukutan. Penentuan stasiun pengamatan dilakukan dengan  menggunakan  metode  purposive  sampling  untuk  mewakili  rona  lingkungan  yang  ada. Identifikasi  fitoplankton,  kelimpahan,  indeks  biologis,  dan  pengukuran  parameter  lingkungan dilakukan dalam penelitian ini. Hasil penelitian menunjukkan struktur komunitas fitoplankton terdiri dari 77 genera, dimana Bacillariophyceae merupakan komponen dengan persen kontribusi tertinggi (90,44%).  Jenis  yang  paling  banyak  ditemukan  yaitu Cocconeis,  Nitzchia,  Synedra ,  dan Chaetoceros .  Kelimpahan  fitoplankton  berkisar  antara  2-1521  ind/L.  Indeks  biologi  menunjukkan bahwa  perairan  Teluk  Melanau  berada  pada  kondisi  tidak  tercemar.  Parameter  lingkungan  masih dalam rentang optimal untuk pertumbuhan fitoplankton. Kelimpahan fitoplankton berkorelasi sangat kuat  dengan  salinitas,  DO,  nitrat,  dan  fosfat,  berkorelasi  kuat  dengan  pH  dan  berkorelasi  sangat lemah dengan kecerahan, suhu, dan kecepatan arus. Kata kunci: struktur komunitas, fitoplankton, bioindikator, pulau Lemukutan.

## PENDAHULUAN
Secara  administratif,  pulau  Lemukutan terletak di Kecamatan Sungai Raya Kepulauan, Kabupaten  Bengkayang,  Kalimantan  Barat.
Pulau tersebut memiliki luas wilayah ± 1,453 Ha (Bappeda  Kabupaten  Bengkayang,  2021). Berdasarkan  Keputusan  Menteri  Kelautan  dan Perikanan Nomor 90/KEPMEN-KP/2020, pulau Lemukutan  masuk  ke  dalam  salah  satu
Kawasan  Konservasi  Pesisir  dan  Pulau-Pulau Kecil  (KKP3K)  di  Kalimantan  Barat.  Perairan pulau Lemukutan memiliki potensi sumberdaya alam  dengan  tingkat  keanekaragaman  yang tinggi,  seperti  terumbu  karang  (Pranata et  al ., 2018; Rudianto et al ., 2020; Nurcahyanto et al ., 2021), lamun (Herlina et al., 2018; Gusmalawati dan Sanova, 2018), rumput laut (Sofiana et al. , 2022;  Fatriyanti et  al .,  2022),  dan  gastropoda (Magdalena et  al .,  2019).  Teluk  Melanau merupakan  pusat  administrasi  dan  berbagai aktivitas di pulau Lemukutan, seperti pendidikan  dan  perekonomian.  Pada  saat  ini, pulau Lemukutan telah dikelola dan dikembangkan  sebagai  salah  satu  destinasi wisata  bahari  di  Kalimantan  Barat.  Potensi tersebut mendorong peningkatan jumlah wisatan  yang  berkunjung,  aktivitas  navigasi, tempat penginapan, dan pengembangan berbagai  macam  industri.  Aktivitas  manusia merupakan faktor yang menyumbang pembuangan  limbah,  sampah,  dan  adanya unsur hara. Aktivitas tersebut dapat memberikan dampak terhadap kualitas perairan. Kegiatan antropogenik rentan mengakibatkan  perubahan  ekosistem  dan dapat membahayakan habitat organisme akuatik (Gholizadeh et al ., 2016; Hamuna et al .,
2018; Patty et al ., 2019). Penurunan kualitas air akan  menurunkan  produktivitas  dan  daya dukung sumber daya perairan tersebut (Hamuna et al ., 2018).
Monitoring  kualitas  perairan  dianggap sangat penting (Warhate et al ., 2006). Kegiatan ini  dapat  dilakukan  dengan  menganalisis karakteristik  fisika,  kimia,  dan  biologi  (Kazi et al .,  2009),  termasuk  menggunakan  mikroalga. Mikroalga  memiliki  peran  penting  dalam ekosistem  perairan  sebagai  produsen  primer
dan  juga  penyumbang  oksigen  terlarut. Keberadaan mikroalga sering digunakan sebagai bioindikator kualitas perairan (Yuliana, 2015).  Hal  ini  dikarenakan  mikroalga  memiliki siklus  hidup  yang  pendek  dan  adaptasi  tinggi terhadap  perubahan  lingkungan  (Nugroho, 2006). Penelitian sebelumnya mengenai mikroalga epifit berasosiasi pada daun Thalassia hemprichii di perairan pulau Lemukutan menemukan bahwa mikroalga kelas Bacillariophyceae  memiliki  persen  kontribusi tertinggi (66,05%), dibandingkan dengan kelas lainnya. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui  struktur  komunitas  mikroalga sebagai  bioindikator  kualitas  perairan  dan menganalisis  korelasi  parameter  lingkungan terhadap  kelimpahan  fitoplankton  di  Perairan Teluk  Melanau,  Pulau  Lemukutan,  Kalimantan Barat.

## METODE PENELITIAN

## Lokasi Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  bulan  Maret 2022  di  perairan  Teluk  Melanau,  Pulau Lemukutan, Kabupaten Bengkayang, Kalimantan Barat. Pengambilan sampel mikroalga  dan  pengukuran  parameter  fisika- kimia perairan dilakukan di tiga stasiun dengan tiga  kali  pengulangan.  Penentuan  stasiun pengamatan  dilakukan  dengan  menggunakan metode  purposive  sampling  untuk  mewakili rona  lingkungan  yang  ada  (Ayuningsih  et  al., 2014). Stasiun I merupakan daerah pemukiman penduduk  (N  00°45.696  dan  E  108°42.889), stasiun  II  merupakan  daerah  dekat  dengan dermaga kapal (N 00°45.805 dan E 108°42.957), dan stasiun III merupakan daerah jauh dari aktivitas penduduk (N 00°46.046 dan E 108°42.752) (Gambar 1).
Gambar 1. Peta Lokasi Penelitian di perairan Teluk Melanau, Pulau Lemukutan, Kalimantan Barat

## Sampling Mikroalga
Sampling  mikroalga  dilakukan  dengan cara  menyaring  air  laut  sebanyak  100  L menggunakan plankton  net dengan  diameter bukaan  mulut  30  cm ,  mesh  size 30  μm,  dan panjang  jaring  100  cm  (Aquino et  al .,  2010; Mulyani et  al .,  2012).  Air  yang  telah  tersaring dimasukkan  ke  dalam  botol  falkon  dan ditambahkan akuades hingga mencapai volume final  20  mL.  Kemudian,  sampel  ditambah dengan larutan formalin (4%) sebanyak 3 tetes (Edler  and  Elbrachter,  2010).  Sampling dilakukan  sebanyak  tiga  kali  ulangan  di  setiap stasiun.  Selanjutnya,  semua  sampel  disimpan dalam coolbox dan  dijaga  dari  sinar  matahari langsung  (Aryawati et  al .,  2017)  untuk menghindari kerusakan pada sampel. Identifikasi fitoplankton dilaksanakan di
Laboratorium Ilmu
Kelautan,
Fakultas
Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam, Universitas Tanjungpura, Kalimantan Barat.
Pengukuran Parameter Fisika-Kimia Perairan Pengukuran parameter
fisika-kimia perairan  dilakukan  secara  in  situ  bersamaan dengan sampling mikroalga. Parameter seperti suhu,  salinitas, Dissolved  Oxygen (DO),  dan salinitas  diukur  menggunakan Water  Quality Checker (WQC)  AZ  8603.  Kedalaman  dan kecerahan perairan diukur menggunakan sechii disk ,  kecepatan  arus  diukur  dengan  layang- alayang arus. Pengambilan sampel air untuk uji kandungan nitrat dan fosfat menggunakan botol kaca  sebanyak  100  mL  berdasarkan  (SNI- 6964.8:  2015)  tentang  Metode  Pengambilan Contoh  Uji  Air  Laut,  kemudian  disimpan  ke dalam coolbox dan dijaga suhunya hingga 4 ⁰C (Nasution et al. , 2019). Sedangkan konsentrasi nitrat  dan  fosfat  dilakukan  di  Laboratorium Kualitas  dan  Kesehatan  Pangan,  Fakultas Pertanian,
Universitas Tanjungpura, Kalimantan Barat berdasarkan SNI 6989.79:2011 dan SNI 06.6989.31-2005 . Identifikasi Mikroalga
Identifikasi  mikroalga  dilakukan  hingga tingkatan genus menggunakan buku identifikasu  oleh  Yamaji  (1984),  Omura  et  al. (2012),  dan  Witkowski  et  al.  (2000).  Analisis secara  kuantitatif  dilakukan  dengan  cara meneteskan  sampel  mikroalga  pada  object glass  (Ganai  and  Parveen,  2014)  sebanyak  1 mL  dan  perhitungan  jumlah  sel  dilakukan dengan  bantuan  mikroskop  binokular  dengan perbesaran 40x10.
Analisis Data
Kelimpahan (K) dihitung dengan menggunakan rumus :
K = 𝑄1 𝑄2 𝑥 𝑉𝑟 𝑉𝑜 𝑥 1 𝑝 𝑥 1 𝑉 𝑥 𝑛𝑖
dimana  K  adalah  kelimpahan  mikroalga (ind/L), Q 1 adalah luas cover glass (mm 2 ), Q 2 adalah luas lapang pandang (mm 2 ), Vr adalah  volume  sampel  yang  terkonsentrat (20  mL),  Vo  adalah  volume  sampel  yang diamati  (1  mL),  p  adalah  jumlah  lapang pandang yang diamati, V adalah volume air yang  disaring  (100  mL),  dan  ni  adalah jumlah individu yang ditemukan (ind).
Kelimpahan Relatif (KR), dihitung menggunakan rumus sebagai berikut : KR (%) = K suatu jenis K total x 100
Indeks  Keanekaragaman  (H’)  dihitung menggunakan rumus Shannon-Wienner (1969), sebagai berikut :
𝐻 ′ = − ∑ 𝑝𝑖 ln 𝑝𝑖 𝑛 𝑘=0
dimana  H’  adalah  indeks  keanekaragaman,  pi adalah kelimpahan proporsional masing- masing spesies (ni/N), ni adalah jumlah individu jenis ke-i, N adalah jumlah total individu dalam komunitas. Indeks keanekaragaman (H’) dapat diklasifikasikan  menjadi  tiga  kriteria  (Odum, 1993),  yaitu  H’<1  menunjukkan  tingkat keanekarag aman rendah, 1<H’<3 menunjukkan tingkat  keanekaragaman  sedang,  dan  H’>3 menunjukkan  tingkat  keanekaragaman  tinggi. Selain  itu,  nilai  indeks  keanekaragaman  juga dapat  digunakan  untuk  menilai  ktingkat pencemaran  suatu  perairan.  Nilai  H’<1 mengindikasikan  bahwa  perairan  tercemar, 1<H’<3  mengindikasikan  bahwa  perairan tercemar  sedang,  dan  H’>3  mengindikasikan bahwa perairan dalam kondisi tidak tercemar. Indeks  keseragaman  (E)  digunakan untuk  menentukan  distribusi  mikroalga  dalam suatu  komunitas.  Indeks  ini  dihitung  dengan menggunakan  rumus  (Odum,  1993)  sebagai berikut :
E = H′ H max
dimana  E  adalah  indeks  keseragaman,  H’ adalah indeks keanekaragaman, H max = ln S, dimana S adalah jumlah genus yang ditemukan.  Nilai  indeks  keseragaman  berkisar
antara  0-1,  dimana  nilai  E  mendekati  0 menujukkan  keseragaman  populasi  semakin kecil,  persebaran  individu  setiap  genus  tidak sama,  dan  terdapat  kecenderungan  suatu genus  mendominasi  populasi.  Sebaliknya,  jika nilai E mendekati 1, menunjukkan keseragaman  yang  tinggi,  jumlah  individu masing-masing genus tidak jauh berbeda,  dan tidak ada kecenderungan suatu genus mendominasi dalam populasi (Krebs, 1985).
Indeks  dominansi  Simpson  (C)  digunakan untuk  menentukan  tingkat  dominasi  jenis mikroalga  di  perairan,  dan  dapat  dihitung dengan  rumus  (Odum,  1993)  sebagai berikut:

## C = ∑ (ni/N)2
Dimana C adalah indeks dominansi Simpson, ni adalah jumlah individu jenis ke-i, dan N adalah jumlah  total  individu  dalam  komunitas.  Nilai indeks  dominansi  diklasifikasikan  menjadi  tiga kriteria  (Odum,  1993),  yaitu  nilai  C<0,50 menunjukkan  tingkat  dominasi  rendah,  nilai 0,50<C>0,75  menunjukkan  dominasi  sedang, dan  nilai  C>0,75  menunjukkan  dominasi  tinggi (Krebs, 1989).
Indeks Similaritas Sorensen (ISS) digunakan untuk melihat kemiripan jenis antar stasiun pengambilan  data.  Indeks  tersebut  dapat dihitung  menggunakan  rumus  sebagai berikut (Krebs, 1989) :
ISS=2c/(a+b)  x 100%
Dimana a adalah jumlah genus pada stasiun a, b  adalah  jumlah  genus  pada  stasiun  b,  dan  c adalah jumlah genus yang sama pada stasiun a dan b.
Nilai  ISS  dapat  diklasifikasikan  menjadi empat kriteria menurut (Odum, 1993), yaitu nilai ISS <25% menandakan sangat tidak mirip, ISS antara  25-50%  menandakan  tidak  mirip,  ISS antara  50-75%  menandakan  mirip,  dan  ISS antara  75-100%  menandakan  sangat  mirip. Analisis  korelasi  dilakukan  untuk  melihat pengaruh  parameter  lingkungan  terhadap kelimpahan fitoplankton menggunakan Principle  Component  Analysis  (PCA)  dengan Software SPSS versi 25.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Komposisi  Jenis  Fitoplankton  di  Perairan Teluk Melanau Pulau Lemukutan
Berdasarkan hasil identifikasi fitoplankton di  semua  stasiun  pengambilan  data,  terdapat 77  genus  fitoplankton  yang  tergolong  dalam
kelas Bacillariophyceae
(58 genus), Cyanophyceae  (5  genus),  Dinophyceae  (6 genus), Chlorophyceae (3 genus), Zygnematophyceae (2 genus), Trebouxiophyceae (2
genus), dan Trebouxiophyceae  (1  genus).  Hasil  penelitian ini hampir sama dengan penelitian oleh Hidayat et  al.  (2021)  dilakukan  di  Perairan  Pulau Kabung,  yang  juga  menemukan  7  kelas  yaitu Bacillariophyceae, Cyanophyceae, inophyceae, Chlorophyceae, Coleochaetophyceae,
Trebouxiophyceae  dan  Ulvophyceae.  Hal  ini diduga  kerana  jarak  antara  pulau  Lemukutan dengan pulau Kabung yang relatif berdekatan.
Struktur komunitas dan komposisi mikroalga  yang  berbeda  di  setiap  lokasi pengambilan  sampel  terjadi  karena  pengaruh faktor lingkungan, seperti arus (Al-Harbi, 2017), suhu, salinitas, pH, kandungan oksigen terlarut, ketersediaan nutrisi, cahaya dan kualitas air (El- Din et al., 2015), serta predator (Borowitzka et al.,  2006) dapat mempengaruhi kolonisasi  dan pertumbuhan  fitoplankton.  Di  perairan  Teluk Melanau, diantara fitoplankton yang ditemukan, kelas  Bacillariophyceae  (diatom)  memiliki persen  kontribusi  tertinggi  (90,44%),  dengan diatom  pennate  (74,39%)  dan  diatom  sentris (25,61%). Diatom pennate memiliki persentrase kontribusi  lebih  tinggi  karena  diatom  ini berkemampuan  tumbuh  secara  cepat  dan mampu  menggunakan  ketersediaan  nutrisi secara  efisien  pada  kondisi  intensitas  cahaya rendah (Lizotte, 2001). Kelas Bacillariophyceae ini  merupakan  kelompok  utama  fitoplankton yang sering ditemukan di perairan laut terbuka, perairan tawar, dan aliran sungai (Purnawan et al., 2016). Di Kalimantan Barat dan Kepulauan Riau,  beberapa  penelitian  sebelumnya  juga menemukan  dominasi  kelas  Bacillariophyceae di perairan (Herlina et al., 2018; Tarigas et al., 2020; Lestari et al., 2020; Hidayat et al., 2021). Pada umumnya, kelas ini juga digunakan sebagai  indikator  biologis  kualitas  perairan (Arifin  et  al.,  2015).  Diatom  sering  digunakan untuk  mengevaluasi  dampak  perubahan  iklim dan  pengayaan  nutrisi  (Ruhland  et  al.,  2008; McQuatters-Gollop, 2012). Selain itu, Bacillariophyceae  bersifat  kosmopolit,  memiliki kemampuan  adaptasi  tinggi  terhadap  kondisi lingkungan  yang  ekstrim  (Arifin  et  al.,  2015), serta  memiliki  siklus  hidup  yang  singkat  dan tingkat  reproduksi  yang  tinggi  (Nirmalasari, 2018)  yang  disebabkan  oleh  ketersediaan nutrisi  di  perairan  (Barokah  et  al.,  2016). Aktivitas manusia berkontribusi terhadap kandungan  nitrogen  (N),  nitrat  (NO3),  fosfat (PO3),  silikat  (SiO2),  dan  amoniak  (NH3)
(Haninuna  et  al.,  2015;  Balqis  et  al.,  2021). Nitrat dan fosfat berperan terhadap pertumbuhan diatom (Gurning et al. , 2020).
Gambar 2. Persentase fitoplankton berdasarkan kelas pada masing-masing stasiun
Kelas  Dinophyceae  memiliki  persentase tertinggi  di  stasiun  I  (4,15%)  dibandingkan denga  stasiun  lainnya.  Stasiun  I  yang  dekat dengan  perumahan  dan  adanya  buangan limbah  rumah  tangga  dapat  meningkatkan pasokan unsur hara. Kondisi tersebut mendukung  keberadaan  kelas  Dinophyceae tersebut.  Apabila  perairan  dalam  kondisi terlewat  subur  (eutrofikasi)  maka  dapat menyebabkan terjadinya Harmful Algae Blooms (HABs)  dan  menghasilkan  racun  (Hernandez- Bacerril et al., 2018) yang berbahaya terhadap organisme  akuatik  lainnya.  Beberapa  genus yang dapat menghasilkan toksin yaitu Alexandrium,  Gymnodinium,  Pyrodinium,  dan Dinophysis  (Tungka  et  al.,  2016).  Kelas Cyanophyceae memiliki persentase tertinggi di stasiun  III  (3,96  %),  dan  tergolong  cukup rendah. Hal ini diduga karena kelas ini memiliki preferensi  hidup  pada  salinitas  rendah  dan suhu tinggi (Aziz et al., 2015), dan merupakan divisi  utama  di  perairan  tawar  (Bellinger  and Sigee,  2010).  Penelitian  Saragih  dan  Erizka (2018)  menemukan  kelas  Cyanophyceae dengan  kelimpahan  tertinggi  dibandingkan kelas  lainnya.  Selain  itu,  tingginya  persen kontribusi  di  stasiun  III  disebabkan  karena kandungan  unsur  hara  (nitrat  dan  fosfat)  yang rendah.  Menurut  Nirmalasari  (2018)  dan Widigdo  et  al.  (2013),  kelas  Cyanophyceae sering ditemukan di perairan yang mengandung unsur  hara  dengan  konsentrasi  rendah.  Hasil
penelitian  ini  juga  senada  dengan  penelitian yang dilakukan oleh Lestari et al. (2020),  yang menemukan kelas Cyanophyceae lebih banyak ditemukan  pada  kawasan  yang  jauh  dari aktivitas  penduduk  dengan  persentase  10,62 %.  Kelas  Chlorophyceae  memiliki  persentase tertinggi di stasiun I (2,22%). Kelas ini memiliki preferensi yang sama dengan kelas Cyanophyceae,  yaitu  hidup  optimal  pada salinitas  yang  rendah.  Berdasarkan  hasil pengukuran parameter lingkungan, nilai salinitas  di  stasiun  tersebut  tergolong  cukup tinggi.  Penelitian  sebelumnya  menemukan penyebaran kelas Chlorophyceae dominan dan bersifat kosmopolit (Ferial and Salam, 2016) di perairan tawar (Bellinger and Sigee, 2010) dan estuari  (Apriansyah  et  al.,  2021)  yang mempunyai  nilai  salinitas  rendah  (Abizar  dan Rahmah,  2020),  dan  perairan  yang  tergenang seperti  danau  (Aziz  et  al.,  2015).  Kelimpahan dan dominasi kelas Chlorophyceae juga dapat memicu terjadinya fenomena eutrofikasi (Suryono and Sudarso, 2019).
Kelimpahan  fitoplankton  yang  ada  di perairan teluk Melanau berkisar antara  2-1521 ind/L (Gambar 3). Dari semua jenis fitoplankton yang  teridentifikasi,  genus  yang  paling  banyak ditemukan yaitu Cocconeis, Nitzchia, Synedra, dan  Chaetoceros  yang  memiliki  distribusi  luas dan tingkat adaptasi tinggi terhadap perubahan kondisi lingkungan. Hal ini dapat dilihat bahwa genus tersebut dapat ditemukan di semua  titik
pengambilan sampel dengan kelimpahan tinggi, yaitu  Cocconeis  (1521  ind/L),  Nitzchia  (1340 ind/L),  Synedra  (892  ind/L),  dan  Chaetoceros (853  ind/L).  Dominasi  Cocconeis  telah  banyak dilaporkan oleh beberapa penelitian sebelumnya (Wetzel et al., 2019; Tarigas et al., 2020). Hal ini disebabkan karena jenis tersebut memiliki tingkat reproduksi tinggi, daya kolonisasi dan pelekatan kuat pada permukaan substrat  (Gacia  et  al.,  2009).  Selain  itu, Penelitian lain mengemukakan bahwa Cocconeis  dapat  mendominasi  komunitas diatom bentik di lintang tinggi (Majewska et al., 2012).
Berdasarkan  hasil  penelitian  sebelumnya, genus  Nitzschia  juga  banyak  dilaporkan mendominasi di perairan (Hamsher et al., 2016; et al., 2021). Jenis ini memiliki adaptasi tinggi di perairan (Israwati et al., 2018), distribusi luas di perairan maupun berbagai karakteristik substrat,  kosmopolit,  bersifat  motil  dan  soliter (Kellogg and Kellogg, 2002). Nitzschia memiliki alat  gerak  berupa  tangkai  gelatin  sehingga mudah  menempel  pada  subatrat  (Al-Harbi, 2017). Selain itu, Nitzschia ditemukan melimpah pada kondisi perairan dengan tingkat salinitas  tinggi,  suhu  yang  bervariasi,  serta perairan  dengan  pengaruh  arus,  gelombang, dan pasang surut (Turner and Rabalais, 1991;
Dorth  and  Fryxell,  1992).  Pasang  surut mempengaruhi  distribusi  Nitzschia  secara horizontal (Arsad et al., 2021). Di perairan teluk Melanau,  genus  Synedra  juga  ditemukan melimpah  di  semua  stasiun  pengambilan sampel. Penelitian sebelumnya juga melaporkan  kelimpahan  Synedra  di  perairan (Heramza  et  al.,  2021;  Hidayat  et  al.,  2021). Synedra  memiliki  kemampuan  bertahan  dan adaptasi  tinggi  terhadap  perubahan  kondisi perairan  yang  ekstrim  (Isti’anah,  2015).  Hasil penelitian  Rangpan  (2008),  jenis  Synedra mendominasi  di  perairan  dengan  kondisi tercemar dan oksigen terlarut dengan konsentrasi rendah.
Oleh  karena  itu,  keberadaan  Synedra dapat  dijadikan  sebagai  bioindikator  kondisi lingkungan  dan  kualitas  perairan.  Selain  itu, tingginya  kepadatan  Synedra  karena  memiliki sel pembungkus yang berlapis dan sitoplasma yang mengandung mukopolisakarida, sehingga memiliki  kemampuan  beradaptasi  terhadap kondisi lingkungan yang kurang menguntungkan  (Conradie,  2008).  Jenis  ini juga  mampu  mengakumulasi  nutrisi  dan menyimpannya  sebagai  cadangan  makanan dalam bentuk polimer yang tidak larut (Arsad et al., 2021).
Gambar 3. Kelimpahan fitoplankton di perairan Teluk Melanau, Pulau Lemukutan, Kalimantan Barat

## Indeks  Keanekaragaman,  Keseragaman, dan Dominansi
Kestabilan  komunitas  fitoplankton  di  perairan dapat dilihat dari nilai indeks keanekaragaman (H’),  indeks  keseragaman  (E),  dan  indeks dominasi (C) (Tabel 1).
Indeks keanekaragaman ditentukan oleh jumlah spesies, jumlah individu, dan pola sebarannya
(Krebs,  1985).  Suatu  komunitas  dikatakan memiliki  keanekaragaman  yang  tinggi  apabila terdapat  banyak  jenis  dengan  jumlah  individu setiap  jenis  relatif  sama.  Namun,  jika  suatu komunitas  terdiri  dari  beberapa  jenis  dengan jumlah  individu  setiap  jenis  relatif  tidak  sama, maka komunitas tersebut
memiliki keanekaragaman yang rendah (Barus, 2004).
Tabel 1. Indeks Keanekaragaman (H’), Keseragaman (E) dan Dominansi ©
Indeks Stasiun I Stasiun II Stasiun III Keanekaragaman (H') 2,93 3,41 3,37 Keseragaman (E) 0,71 0,80 0,79 Dominansi (C) 0,09 0,05 0,06
Indeks keanekaragaman (H’) fitoplankton di perairan Teluk Melanau berada pada rentang 2,93-3,41.  Nilai  tertinggi  terdapat  pada  stasiun II,  sedangkan  nilai  terendah  pada  stasiun  I. Perairan  Teluk  Melanau  memiliki  tingkat keanekaragaman  tergolong  dalam  kategori tinggi  (Odum,  1993).  Hal  ini  diduga  karena pengaruh  faktor  fisika-kimia  perairan  sehingga hanya  mikroalga  jenis  tertentu  saja  yang mampu  beradaptasi  dengan  kondisi  tersebut. Indeks keanekaragaman yang tinggi menunjukan  kemampuan  fitoplankton  untuk memanfaatkan  faktor  lingkungan  dengan  baik, sehingga genus tertentu yang toleran terhadap kondisi  lingkungan  akan  cenderung  melimpah dibandingkan dengan genus lainnya (Shabrina et  al.,  2020  dan  Yuliana,  2015).  Tingginya indeks keanekaragaman pada stasiun II diduga dipengaruhi oleh kecepatan arus dan kecerahan,  dimana  kecepatan  arus  dan kecerahan menunjukkan korelasi positif terhadap  indeks  keanekaragama.  Selanjutnya, nilai  keanekaragaman  berdasarkan  indeks Shannon-Wiener terkait dengan tingkat pencemaran  (Begon  et  al.,  1986),  perairan Teluk  Melanau  dalam  kondisi  tidak  tercemar. Berdasarkan  hasil  perhitungan,  nilai  indeks keseragaman  (E)  berada  pada  rentang  0,71- 0,80.  Nilai  tertinggi  terdapat  pada  stasiun  II, sedangkan  nilai  terendah  pada  stasiun  I. Kondisi  ini menandakan bahwa perairan Teluk Melanau  memiliki  tingkat  keseragaman  tinggi.
Indeks keseragaman yang tinggi menunjukkan bahwa  setiap    genus  dapat  memanfaatkan nutrien  yang  terdapat  di  perairan  secara bersamaan  (Shabrina  et  al.,  2020).  Hasil penelitian  ini  tidak  jauh  berbeda  dengan penelitian yang dilakukan oleh Novasaraseta et al.  (2018)  yang  mendapatkan  nilai  indeks keseragaman  berkisar  0,69-0,78.  Tingginya indeks  keseragaman  pada  stasiun  II  diduga dipengaruhi oleh kecepatan arus dan kecerahan,  dimana  kecepatan  arus  dan kecerahan menunjukkan korelasi positif terhadap  indeks  keseragaman.  Sedangkan, nilai indeks dominansi (C) dalam rentang antara 0,05-0,09  dimana  perairan  tersebut  masuk  ke dalam  kategori  rendah  (Odum,  1993).  Hal tersebut  menunjukan  bahwa  tidak  ada  genus yang  mendominansi  pada  setiap  stasiun  dan masih  tergolong  rendah.  Menurut  Yuliana (2014),  nilai  indeks  dominansi  yang  rendah menunjukkan  tidak  adanya  genus  yang mendominansi terhadap genus lainnya. Kondisi ini  mengindikasikan  bahwa  semua  genus memiliki  kesempatan  dan  kemampuan  yang sama  untuk  tumbuh  dalam  keadaan  kondisi lingkungan  yang  baik.  Tingginya  indeks dominansi  pada  stasiun  I  diduga  dipengaruhi oleh  suhu,  DO,  pH,  salinitas,  nitrat  dan  fosfat, dimana faktor lingkungan tersebut menunjukkan  korelasi  positif  terhadap  indeks dominansi.
Tabel 2 . Indeks Similaritas Sorensen (ISS) Stasiun I Stasiun II Stasiun III Stasiun I - 86,36% 85,71% Stasiun II - - 95,10% Stasiun III - - -
Hasil  perhitungan  Indeks  Similaritas Sorensen  (ISS)  digunakan  untuk  menunjukan gambaran tingkat kesamaan komunitas fitoplankton pada setiap stasiun (Hidayat et al., 2020).  Nilai  ISS  fitoplankton  di  perairan  Teluk Melanau  berkisar  antara  85,71-95,10%.  Nilai tersebut mengindikasikan  bahwa  antar stasiun pengambilan  sampel  memiliki  kategori  sangat mirip,  dimana  komposisi  jenis  yang  menyusun komunitas pada setiap stasiun relatif sama. Hal ini  diduga  karena  jarak  stasiun  yang  masih saling  berdekatan  sehingga  massa  air  dan nutrisi  saling  bercampur.  Percampuran  nutrisi yang  terkandung  di  perairan  diduga  dapat mempengaruhi kesamaan spesies antar stasiun  (Barus,  2004).  Selain  itu,  kondisi lingkungan  yang  homogen  menyebabkan kesamaan struktur komunitas fitoplankton yang ada (Tarigas et al., 2020).

## Kondisi  Parameter  Kualitas  di  Perairan Teluk Melanau
Kondisi  kualitas  lingkungan  dapat  dilihat dengan  melakukan  pengukuran  parameter fisika-kimia perairan. Tingkat kecerahan
berkaitan  erat  dengan  intensitas  cahaya matahari  yang  masuk  ke  kolom  perairan (Effendi,  2003).  Berdasarkan  hasil  penelitian, nilai  kecerahan  di  lokasi  penelitian  berkisar antara  100-233  cm.  Cahaya  matahari  yang mampu  menembus  hingga  ke  dasar  perairan dapat menandakan bahwa lingkungan perairan dalam  kondisi  baik  (Schaduw  dan  Ngangi, 2015).  Cahaya  berperan  penting  untuk  proses fotosintesis  (Effendi,  2003),  dimana  intensitas cahaya  yang  rendah  akan  menyebabkan aktivitas  fotosintesis  menurun  (Rumanti  et  al., 2014). Fitoplankton  menunjukkan respon yang bervariasi  terhadap  intensitas  cahaya.  Kelas Dinophyceae dan Cyanophyceae akan mengatur  volume  vakuola  untuk  aktivitas migrasi  vertikal  harian  (DVM)  (Effendi,  2003). Kecepatan arus mempengaruhi gas-gas terlarut dan  nutrien  di  dalam  perairan  (Barus,  2004; Kordi  dan  Tancung,  2010).  Selain  itu, kecepatan arus di perairan akan mempengaruhi kelimpahan  fitoplankton  (Wijaya  et  al.,  2022). Nilai  kecepatan  arus  di  Teluk  Melanau  berada pada rentang 0,017-0,12 m/s, dan masuk dalam kategori kecepatan arus sangat lemah.
Tabel 3. Parameter Kualitas Perairan di Teluk Melanau Pulau Lemukutan
Parameter Stasiun Literatur I II III Kecerahan (cm) 100 233 150  45 cm (Asmawi, 1985) Kecepatan arus (m/s) 0,017 0,12 0,02 Arus sedang (0,25-0,5 m/s) dan arus kuat (0,5-1 m/s) (Mason 1981) Suhu (°C) 31,5 30,3 31,3 20 - 32 °C (Schaduw et al ., 2013; Effendi, 2016) Salinitas (ppt) 31,75 31,45 31,25 28 - 34 ppt (Supriharyono, 2000) DO (mg/L) 7,05 5,5 5,3  5 mg/L (Kepmen-LH No. 51 Tahun 2004) pH 8,60 8,35 8,36 6,5 – 8,5 (Odum, 1993; Effendi, 2003) Nitrat (mg/L) 3,45 3,15 2,96 0,9 - 3,5 mg/L (Ardiansyah, 2017) Fosfat (mg/L) 4,08 3,56 3,10 0,27 - 5,51 mg/L (Effendi, 2003)
Pada penelitian ini, nilai pengukuran suhu berkisar  antara  30,3-31,5  °C,  dimana  nilai tersebut  masih  masuk  dalam  rentang  optimal yang  mendukung  kehidupan  fitoplankton. Berdasarkan hasil penelitian sebelumnya, suhu di  perairan  pulau  Lemukutan  berada  pada rentang  29,1-30,3  °C  (Nurcahyanto  et  al., 2021).  Suhu  merupakan  faktor  pembatas  bagi keberadaan,  pertumbuhan,  dan distribusi fitoplanton (Odum, 1993; Effendi, 2003; Nontji, 2005;  Adenan  et  al.,  2013;  Brahmana,  2014). Selain itu, peningkatan suhu dapat mempengaruhi proses fisika, kimia, dan biologi yang  ada  di  perairan  (Kusumaningtyas  et  al., 2014). Suhu akan mempengaruhi laju metabolisme,  respirasi,  reproduksi,  migrasi biota (Brahmana, 2014; Kusmana et al., 2015;
Rangkuti et al., 2017), serta biomassa, klorofil- a,  dan  komposisi  biokimia  dalam  tubuh fitoplankton  (Militão  et  al.,  2019;  Sas  et  al., 2021).  Beberapa  penelitian  sebelumnya  telah banyak  melaporkan  pengaruh  suhu  terhadap kehidupan  fitoplankton  (Ras  et  al.,  2013; Safarov et al., 2015; Muñoz dan Bernard, 2021). Nilai  suhu  optimal  untuk  spesies  psikrofilik (Asterionella)  yaitu  ±  17  °C,  untuk  spesies mesofilik  pada  rentang  20-25  °C,  dan  spesies termofilik seperti Chaetoceros dapat mencapai >40 °C. Suhu yang optimal membuat sel dapat melakukan proses fotosintesis tanpa mempengaruhi  fisiologi  maupun  komposisi kimia dalam tubuh (Ras et al., 2013). Nilai suhu yang  lebih  tinggi  meningkatkan  aktivitas enzimatik  sel  dan  mendukung  pertumbuhan.
Namun, ketika mencapai batas kritis, beberapa protein dalam tubuh fitoplankton mulai terdenaturasi,  terutama  yang  terlibat  dalam fotosistem  dan  rantai  transpor  elektron,  yang berdampak  pada  metabolisme  sel  (Ras  et  al., 2013)  dan  pada  akhirnya  menyebabkan kematian sel (Serra-Maia et al., 2016).
Nilai salinitas pada penelitian ini berkisar 31,25-31,75  ppt  dan  masuk  dalam  rentang optimal yang mendukung pertumbuhan fitoplankton. Salinitas berperan terhadap distribusi dan reproduksi organisme (Kusmana et al., 2015), serta laju pertumbuhan mikroalga (Adenan  et  al.,  2013)  yang  berpengaruh langsung  pada  mekanisme  osmoregulasi  sel (Vonshak  et  al.,  2014).  Penelitian  sebelumnya telah  melaporkan  pengaruh  salinitas  terhadap pertumbuhan fitoplankton (Hotos dan Avramidou,  2021).  Selain  itu,  salinitas  juga berperan  penting  terhadap  komposisi  biokimia yang terdapat dalam tubuh fotoplankton (García et  al.,  2012;  Suyono  et  al.,  2015;  Kumar  dan Saramma, 2018). Beberapa spesies mikroalga memiliki  toleransi  tinggi  terhadap  perubahan salinitas. Peningkatan salinitas dapat meningkatkan  laju  pertumbuhan  fitoplankton (Adenan et al., 2013), tetapi nilai salinitas yang terlalu tinggi akan mempengaruhi laju pembelahan sel dan produktivitas. Sebaliknya, salinitas  yang  terlalu  rendah  mempengaruhi proses fotosintesis dan pertumbuhan fitoplankton. Nilai oksigen terlarut pada penelitian  ini  adalah  5,3-7,05  mg/L  dan  masih tergolong  ke  dalam  rentang  optimal  untuk pertumbuhan organisme, termasuk fitoplankton.  Berdasarkan  Keputusan  Menteri Lingkungan Hidup Nomor 51 Tahun 2004, nilai DO yang dapat mendukung pertumbuhan biota yaitu  >5  mg/L.  Sedangkan,  nilai  DO  <2  mg/L dapat menyebabkan kematikan (Effendi, 2003). Konsentrasi  DO  di  perairan  dipengaruhi  oleh proses  difusi  udara,  fotosintesis,  respirasi, oksidasi  bahan  organik,  suhu,  dan  salinitas (Effendi, 2003; Brahmana, 2014; Ma’arif, 2018). Beberapa penelitian sebelumnya telah melaporkan pengaruh DO terhadap pertumbuhan  mikroalga  (Kazbar  et  al.,  2019; Muñoz  and  Bernard,  2021).  pH  merupakan salah satu parameter kimia yang penting dalam monitoring  stabilitas  perairan  (Simanjuntak, 2009).  Nilai  pH  di  perairan  Teluk  Melanau menunjukkan  kondisi  basa,  dengan  rentang 8,35-8,60.  Kondisi  pH  perairan  berpengaruh terhadap  metabolisme  sel  melalui  aktivitas fotosintesis, fiksasi karbon, dan alokasi karbon ke dalam berbagai jenis molekul (Juneja et al., 2013). Perubahan pH di lingkungan
mempengaruhi aktivitas fungsional mikroorganisme,  terutama  aktivasi  enzim  dan protein  (Li  et  al.,  2020;  Filali  et  al.,  2021). Kemampuan sel untuk bertahan dari variasi pH perairan tergantung pada kemampuan penyesuaian  kondisi  fisiologi  sel  (Clement- Larosière, 2012).
Effendi  (2003)  mengemukakan  bahwa rentang  pH  optimal  yaitu  7-8.5  dan  sebagian besar biota sangat sensitif terhadap perubahan nilai  pH.  Nilai  pH  yang  tinggi  menentukan dominansi fitoplankton yang dapat mempengaruhi  produktivitas  primer  perairan (Megawati et al., 2014). Penelitian sebelumnya melaporkan pengaruh pH terhadap pertumbuhan fitoplankton (Filali et al., 2021; Yu et al., 2022).  Mikroorganisme memiliki rentang pH optimal yang bervariasi untuk pertumbuhan tergantung  pada  reaksi  fisiologis  spesifik mikroalga  terhadap  variasi  pH  lingkungan (Gerloff-Elias  et  al.,  2005).  Sebagian  besar mikroalga menyukai pH netral, tetapi beberapa spesies  telah  ditemukan  tumbuh  di  bawah kondisi  yang  sangat  asam  (pH  <5)  atau  basa (pH>  9)  (Gatamaneni  et  al.,  2018).  Selain  itu, spesies  lain  fitoplankton  akan  menunjukkan respon  negatif  pada  kondisi  perairan  yang asam  (pH<6).  Nilai  pH  yang  rendah  dapat menghambat  pertumbuhan  mikroalga  melalui beberapa  cara,  yaitu  dengan  denaturasi aktivitas  enzim,  terutama  enzim  proteolitik, membatasi motilitas sel, atau dengan membatasi  fotosintesis  dengan  menurunkan total akumulasi karbon dan pelepasan oksigen (Gerloff-Elias et al., 2005).
Nitrat (NO3-N) merupakan bentuk utama nitrogen  di  perairan,  sebagai  sumber  nutrisi penting  bagi  organisme  autotrofik,  termasuk fitoplankton  dan  sebagai  faktor  pembatas pertumbuhan  (Rangkuti  et  al.,  2017;  Kumar  et al.,  2017).  Tingginya  konsentrasi  nitrat  di perairan  dapat  merangsang  pertumbuhan  dan perkembangan  organisme  (Effendi,  2003). Hasil penelitian menunjukkan bahwa konsentrasi  nitrat  berkisar  antara  2,96-3,45 mg/L. Kandungan nitrat tertinggi terdapat pada stasiun  I  yaitu  dekat  dengan  pemukiman penduduk. Kegiatan rumah tangga menyumbangkan  limbah  ke  perairan  yang banyak  mengandung  nitrogen  anorganik  (N), amonia  (NH3),  dan  nitrat  (NO3)  (Haninuna  et al.,  2015).  Kondisi  tersebut  sesuai  dengan penelitian  sebelumnya  yang  dilakukan  oleh Suardiani et al. (2018) yang menyatakan bahwa konsentrasi  nitrat  di  perairan  akan  meningkat apabila  adanya  masukan  limbah  organik  dan anorganik. Menurut Keputusan Menteri
Lingkungan  Hidup  No.  51  (2004),  baku  mutu konsentrasi  nitrat  di  perairan  untuk  biota  laut adalah  0,008  mg/L.  Konsentrasi  >0.2  mg/L dapat  menyebabkan  eutrofikasi  (pengayaan) perairan dan selanjutnya merangsang pertumbuhan  fitoplankton  dan  blooming  alga. Sedangkan, kadar nitrat >0.5 mg/L menggambarkan  terjadinya  pencemaran  yang berasal  dari  aktivitas  manusia  dan  kotoran hewan  (Effendi,  2003).  Beberapa  penelitian sebelumnya telah melaporkan pengaruh konsentrasi nitrat terhadap kehidupan fitoplankton,  seperti  proses  metabolisme  sel dan  produksi  biomassa  (Millán-Oropeza  et  al., 2015;  Pratama  et  al.,  2017),  serta  laju pertumbuhan  (Mishra  et  al.,  2019).  Nitrat merupakan  komposisi  signifikan  nutrien  yang memicu perubahan penting dalam pertumbuhan  dan  komposisi  biokimia  spesies mikroalga (Safdar et al., 2017).
Konsentrasi  fosfat  di  lokasi  pengamatan berkisar  antara  3,01-4,08  mg/L.  Kandungan tertinggi  diamati  pada  stasiun  I  yang  dekat dengan  pemukiman  penduduk.  Sumber  fosfor lebih sedikit daripada sumber nitrogen di dalam air. Fosfor adalah elemen dasar penting dalam organisme  yang  juga  umum  ditemukan  di badan  air,  terutama  terjadi  dalam  bentuk terlarut  (Azam  et  al.,  2019).  Kandungan ortofosfat  di  perairan  dapat  terjadi  akibat adanya  limbah  rumah  tangga  dari  pemukiman penduduk  (Haninuna  et  al.,  2015;  Rangkuti  et al.,  2017),  dimana  85%  dari  total  fosfor  dari limbah  domestik  tersebut  yang  masuk  ke perairan  mengandung  kotoran  manusia  dan deterjen (Vassilev et al., 2016). Deterjen dapat meningkatkan konsentrasi ortofosfat karena ion ini merupakan salah satu komposisi
penyusunnya (Tungka  et al.,  2017).  Selain  itu, deterjen rumah tangga, pasta gigi, dan sampo sering  mengandung  senyawa  fosfor  untuk meningkatkan efisiensi pencuciannya. Senyawa  yang  mengandung  fosfor  paling populer dalam deterjen yaitu natrium tripolifosfat (Wind, 2007). Penelitian sebelumnya telah  melaporkan pengaruh fosfat terhadap pertumbuhan fitoplankton (Yakoob et al., 2021). Fosfor adalah makronutrien esensial yang dibutuhkan untuk mendorong pertumbuhan  alga  dan  mengatur  aktivitas metabolisme  dalam  konsentrasi  yang  optimal (Xin  et  al.,  2018).  Konsentrasi  fosfat  yang berlebihan  di  perairan,  dapat  mempercepat pertumbuhan  fitoplankton  dan  mikroorganisme lainnya. Selanjutnya, kondisi tersebut menyebabkan  ketidakseimbangan  nutrisi  di badan air dan mempercepat eutrofikasi (Azam et al.,  2019).  Nilai  kisaran  ortofosfat  yang  baik untuk  pertumbuhan  fitoplankton  adalah  0,09- 1,8 mg/L (Putrianti et al., 2015). Secara umum konsentrasi fosfat yang dibutuhkan oleh diatom adalah  <0,015  mg/L.  Tingginya  kadar  fosfat dapat memicu peningkatan populasi mikroalga terutama diatom (Pello et al., 2014).

## Hubungan  Parameter  Kualitas  Perairan terhadap Kepadatan Fitoplankton
Analisis  parameter  lingkungan  yang mempengaruhi kepadatan fitoplankton dilakukan  dengan  analisis  komponen  utama (Principle  Component  Analysis).  Hubungan parameter lingkungan perairan yang mempengaruhi kepadatan fitoplankton disajikan  dalam  bentuk  tabel  nilai  matriks korelasi dan bentuk biplot (Gambar 4).
Gambar 4. Analisis PCA untuk mengetahui hubungan parameter kualitas perairan terhadap kepadatan fitoplankton
Analisis PCA menghasilkan 2 komponen utama, yaitu PC1 (70,15%) dan PC2 (29,85%)
dari total variabel yang diobservasi. Kelimpahan fitoplankton berkorelasi sangat kuat dengan
DO,  salinitas,  nitrat,  fosfat  dan  kelimpahan memiliki  hubungan  kuat  dengan  pH.  Korelasi tersebut  menunjukkan  bahwa  peningkatan parameter  lingkungan  tersebut  akan  diikuti dengan  peningkatan  kelimpahan  fitoplankton. Sedangkan, kelimpahan fitoplankton berkorelasi  sangat  lemah  dengan  kecerahan, suhu,  dan  kecepatan  arus.  Korelasi  negatif mengindikasikan  bahwa  adanya  peningkatan nilai  kecerahan  dan  suhu  di  perairan  akan berakibat pada penurunan kelimpahan fitoplankton.  Bertambahnya  kedalaman  akan mempengaruhi  intensitas  cahaya  di  kolom perairan  yang  pada  akhirnya  mengganggu proses  fotosintesis  (Siregar  et  al.,  2014). Kenaikan suhu juga akan menurunkan kelimpahan fitoplankton. Suhu akan mempengaruhi  laju  metabolisme,  respirasi, reproduksi,  migrasi  biota  (Brahmana,  2014;
Kusmana  et  al.,  2015;  Rangkuti  et  al.,  2017), serta  biomassa,  klorofil-a,  dan  komposisi biokimia dalam tubuh fitoplankton (Militão et al., 2019; Sas et al., 2021).

## KESIMPULAN DAN SARAN

## Kesimpulan
Penelitian  ini  menemukan  77  genus  dan kelas Bacillariophyceae memiliki persen kontribusi  tertinggi  (90,44%).  Genus  yang paling  banyak  ditemukan  yaitu  Cocconeis, Nitzchia, Synedra, dan Chaetoceros. Kelimpahan fitoplankton berkisar antara 2-1521 ind/L.  Indeks  biologi  menunjukkan  bahwa perairan  Teluk  Melanau  berada  pada  kondisi tidak  tercemar.  Parameter  lingkungan  masih dalam  rentang  optimal  untuk  pertumbuhan fitoplankton. Kelimpahan fitoplankton berkorelasi  sangat  kuat  dengan  salinitas,  DO, nitrat,  dan  fosfat,  berkorelasi  kuat  dengan  pH dan berkorelasi sangat lemah dengan kecerahan, suhu, dan kecepatan arus.

## Saran
Perlu  dilakukannya  penelitian  lebih  lanjut mengenai  produktivitas  primer  dan  kesuburan perairan  yang  berpotensi  dalam  bidang perikanan  serta  perlu  dilakukannya  monitoring dan  evaluasi  pembuangan  limbah  di  perairan Teluk Melanau Pulau Lemukutan agar kualitas perairan tetap terjaga dan lestari.

## DAFTAR PUSTAKA
Abizar  &  Rahmah,  S.W.  (2020).  Alga  Hijau (Chlorophyceae) yang Ditemukan di Sungai  Sumatera  Barat.  Bioconcetta:
Jurnal Biologi dan Pendidikan Biologi, 6(1),
21-26.
Adenan,  N.S.,  Yusoff,  F.  Md.,  &  Shariff,  M. (2013).  Effect  of  salinity  and  temperature on the growth of diatoms and green algae. Journal of Fisheries and  Aquatic Science, 8(2), 397-404.
Al-Harbi, S.M. & Affan, M.D.A. (2016). Seasonal Dynamics  of  Epiphytic  Microalgae  and Their  Host  Seaweeds  Florideophyceae  at Jeddah Coast, the Red Sea, Saudi Arabia, Pak. Journal Bot., 48(3), 1289-1298.
Al-Harbi,  S.M.  (2017).  Epiphytic  Microalgae Dynamics  and  Species  Composition  on Brown Seaweeds (Phaeophyceae) on the Northern  Coast  of  Jeddah  Saudi  Arabia. Journal Oceanography and Marine Research, 5(1), 1-9.
Apriansyah, Safitri, I., Risko, Afdal, & Arsad, S.
(2021). Microalgae Community as Aquatic Quality Bioindicator in Peniti Estuary West Kalimantan. Saintek Perikanan: Indonesian  Journal  of  Fisheries  Science and Technology, 17(1), 65-73.
Arifin,  S.M.,  Izmiarti,  &  Chairul.  (2015). Komunitas  Fitoplankton  di  Sekitar  Sungai Utama  di  Zona  Litorial  Danau  Singkarak Provinsi  Sumatera  Barat.  Journal  of Natural Science, 4(3), 290-299.
Aquino,  J.,  Flores,  B.,  &  Naguit,  M.  (2010). Harmful  Algal  Bloom  Occurence  in Murcielagos Bay Admidst Climate Change. J. E-International Scientific Research, 2(4), 358-365.
Arsad, S., Sari, L.A., Herawati, E.Y., Musa, M., Hertika, A.M.S., Putra, R.B.D.S., Sumayyah, I., Prayugo, M.A., & Siswanto, D.P.  (2021).  Distribusi  Mikroalga  di Perairan  Indonesia.  Malang:  UB  Press. 188 hlm.
Aryawati,  R.,  Bengen,  D.G.,  Prartono,  T.,  & Zulkifli, H. (2017). Abundance of Phytoplankton  in  the  Coastal  Waters  of South Sumatera. Ilmu Kelautan, 22(1), 31-
39.
Aziz,  R.,  Nirmala  K.,  Affandi,  R.  &  Prihadi,  T.
(2015). Kelimpahan Fitoplankton Penyebab  Bau  Lumpur  pada  Bludidaya Ikan  Bandeng  Menggunakan  Pupuk  N:P Berbeda.  Jurnal  Akuakultur  Indonesia, 14(1), 58-68.
Badan  Standardisasi  Nasional.  (2005).  SNI 06.6989.31-2005.  Air  dan  Air  Limbah – Bagian 31: Cara Uji  Kadar Fosfat dengan Spektrofotometer secara Asam Askorbat.
Badan  Standardisasi  Nasional.  (2011).  SNI 6989.79:2011. Air dan Air Limbah – Bagian 79:  Cara  Uji  Nitrat  (NO3-N)  dengan
Spektrofotometer UV-visibel
secara
Reduksi Kadmium.
Badan  Standardisasi  Nasional.  (2015).  SNI- 6964.8: 2015. Kualitas Air Laut – Bagian 8: Metode Pengambilan Contoh Uji Air Laut. ICS 13.060.45.
Balqis, N., Rahimi, S.A.E., & Damora, A. (2021).
Keanekaragaman dan Kelimpahan Fitoplankton di Perairan Ekosistem Mangrove Desa Rantau Panjang, Kecamatan  Rantau  Selamat,  Kabupaten Aceh Timur. Jurnal Kelautan dan Perikanan Indonesia, 1(1), 35-43.
Barokah,  G.R.,  Putri  A.K.  &  Gunawan. (2016). Kelimpahan  Fitoplankton  Penyebab  HAB (Harmful  Algal  Bloom)  di  Perairan  Teluk Lampung  pada  Musim  Barat  dan  Timur. JPB  Kelautan  dan  Perikanan,  11(2),  115- 126.
Barus,  T.A.  2004.  Pengantar  Limnologi:  Studi tentang Ekosistem Air Daratan. Universitas Sumatera Utara. Medan.
Begon,  M.,  John,  L.H.,  &  Colin,  D.G.  (1986). Ecology.  London:  Blackwall  Scientific Publication.
Bellinger, E.G. & Sigee, D.C. (2010).
Freshwater  Algae:  Identification  and  Use as BioIndicators. Wiley- Blackwell, Chichester, UK, 271 pp.
Borowitzka,  M.A.,  Lavery,  P.,  &  Keulen,  M. (2006).  Epiphytes  of  Seagrasses,  in Seagrasses: Biology, Ecology, and Conservation.  In:  Larkum  AWD,  Orth  RJ, Duarte  CM  (def.).  Springer.  Amsterdam. The Netherland.
Brahmana, P. (2014). Ekologi Laut. Universitas Terbuka. Tangerang. 412 hlm.
Clement-Larosière,  B.  (2012).  Etude  de  la croissance  de  Chlorella  vulgaris  en photobioréacteur  batch  et  continu,  en présence  de  concentrations  élevées  de CO2. Autre. Ecole Centrale Paris. Français.
Conradie,  K.R.,  Du  Plessis,  S.  &  Venter,  A. (2008). School of Environmental Sciences and  Development:  Botany.  South  Africa. South African Journal of Botany, 74(2008), 101-110.
Dortch, Q., Milsted, D., Rabalals, N.N., Lohrenz, S.E.,  Redalje,  D.G.,  Dagg,  M.J.,  Turner, R.E.,  Whitledge,  T.E.  (1992).  Role  of silicate availabllty in phytoplankton species composition and the fate of carbon. Texas Sea Grant Tech Rep., 92-109, Galveston, p. 76-83
Edler, L. & Elbrachter, M. (2010). The Utermohl Method  for  Quantitative  Phytoplankton
Analysis. In: Karlson, B., C. Cusack and E.
Bresnan (Eds.) Microscopic and Molecular Methods for Quantitative Analysis. Intergovernmental Oceanographic
Commission,  United  Nations  Educational, Scientific and Cultural Organization. Spain. pp. 13-15.
Effendi,  H.  (2003).  Telaah  Kualitas  Air  bagi Pengelolaan Sumberdaya dan Lingkungan Perairan. Kanisius. Yogyakarta. 259 hlm.
Effendi,  H.  (2016).  Telaah  Kualitas  Air. Yogyakarta. Kanisius.
El-Din, N.S., Shaltout, N.A.N., Nassar, M.Z., & Soliman,  A.  (2015).  Ecological  Studies  of Epiphytic Microalgae and Epiphytic Zooplankton  on Seaweeds of the  Eastern Harbor,  Alexandria,  Egypt.  American Journal of Environmental Sciences, 11(6), 450-473.
Fatriyanti,  D.,  Warsidah,  Sofiana,  M.S.J.,  & Helena,  S.  (2022).  Analisis  Kandungan Proksimat dan Mineral Zink dari Makroalga Eucheuma cottonii di Perairan Lemukutan. Oseanologia, 1(1), 28-32.
Ferial,  E.W.  &  Salam,  M.A.  (2016).  Fikologi. Jakarta: Erlangga.
Filali,  R.,  Tian,  H.,  Micheils,  E.,  &  Taidi,  B.
(2021). Evaluation of the Growth Performance of Microalgae Based on Fine pH Changes. Austin J. Biotechnol Bioeng, 8(1), 1109.
Gacia, E., Costalago, D., Prado, P., Piorno, D., &  Tomas,  F.  (2009).  Mesograzers  in Posidonia  oceanica  meadows:  an  update of  data  on  gastropod –epiphyte–seagrass interaction. Bot. Mar., 52, 439 –447 Ganai,  A.H.  &  Parveen,  S.  (2014).  Effect  of Physico-chemical Conditions on the Structure and Composition of the Phytoplankton  Community  in  Wular  Lake at  Lankrishipora,  Kashmir.  International Journal  of  Biodiversity  and  Conservation, 6(1), 71-84.
García,  N.,  López-Elías,  J.A.,  Miranda,  A., Martínez-Porchas,  M.,  Huerta,  N.,  & García,  A.  (2012).  Effect  of  salinity  on growth  and  chemical  composition  of  the diatom  Thalassiosira  weissflogii  at  three culture  phases.  Lat.  Am.  J.  Aquat.  Res., 40(2), 435-440.
Gatamaneni,  B.L.,  Orsat,  V.,  &  Lefsrud,  M. (2018). Factors affecting growth of various microalgal species. Environ. Eng. Sci., 35, 1037 –1048. Gerloff-Elias,  A.,  Spijkerman,  E.,  &  Pröschold, T.  (2005).  Effect  of  external  pH  on  the growth, photosynthesis and photosynthetic
electron  transport  of  Chlamydomonas acidophila  Negoro,  isolated  from  an extremely acidic lake (pH  2.6).  Plant,  Cell and Environment, 28, 1218-1229.
Gholizadeh,  M.H.,  Melesse,  A.M.,  &  Reddi,  L. (2016). A comprehensive Review on water Quality  Parameters  Estimation  Using Remote  Sensing  Techniques.  Sensors, 16(8), 1298.
Gurning,  L.F.P.,  Nuraini,  R.A.T.,  &  Suryono. (2020). Kelimpahan Fitoplankton Penyebab Harmful Algal Bloom di Perairan Desa Bedono Demak. J. Marine Research., 9(3), 251-260.
Gusmalawatia,  D.  &  Sanova,  A.S.S.  (2018). Tutupan  Lamun  Thalassia  hemprichii  di Perairan  Dusun  Karang  Utara,  Pulau Lemukutan, Kabupaten Bengkayang, Kalimantan Barat. Journal of Fisheries and Marine Research, 2(3), 186-191.
Hamsher,  S.,  Kopalová,  K.,  KocioleK,  J.P., Zidarova, R., & Vijver, B.V.D. (2016). The genus  Nitzschia  on  the  South  Shetland Islands  and  James  Ross  Island.  Fottea, Olomouc, 16(1), 79 –102.
Hamuna,  B.,  Tanjung,  H.R.R.,  Suwito,  Maury, H.K., & Alianto. (2018). Kajian Kualitas Air Laut dan Indeks Pencemaran Berdasarkan Parameter Fisika-Kimia di Perairan Distrik Depapre, Jayapura. Jurnal Ilmu Lingkungan, 16(1), 35-43.
Haninuna,  E.D.N.,  Gimin,  R.,  &  Kaho,  L.M.R. (2015). Pemanfaatan Fitoplankton sebagai Bioindikator  Berbagai  Jenis  Polutan  di Perairan  Intertidal  Kota  Kupang.  Jurnal Ilmu Lingkungan, 13(2), 72-85.
Heramza, K., Barour, C., Djabourabi, A., Khati, W.,  &  Bouallag,  C.  (2021).  Environmental parameters and diversity of diatoms in the Aïn  Dalia  dam,  Northeast  of  Algeria. BIODIVERSITAS, 22(9), 3633-3644.
Herlina,  N.  Idiawati,  &  I.  Safitri.  (2018). Diversitas  Mikroalga  Epifit  Berasosiasi pada Daun Lamun Thalassia hemprichii di Pulau Lemukutan Kalimantan Barat. Jurnal Laut Khatulistiwa, 1(2), 37-44
Hernández-Becerril,  D.U.,  Lau,  W.L.S.,  Hii, K.S.,  Leaw,  C.P.,  Varona-Cordero,  F.,  & Lim, P.T. (2018). Abundance and Distribution  of  the  Potentially  Toxic Thecate Dinoflagellate Alexandrium
tamiyavanichii (Dinophyceae) in the Central  Mexican  Pacific,  Using  the Quantitative PCR Method. Front. Mar. Sci., 5, 366.
Hidayat,  M.,  Warsidah,  &  Safitri  I.  (2021). Struktur  Komunitas  Mikroalga  Epifit  pada
Padina  dan  Caulerpa  di  Perairan  Pulau Kabung  Kalimantan  Barat.  Jurnal  Laut Khatulistiwa, 4(1), 29-39.
Hotos, G.N. & Avramidou, D. (2021). The Effect of  Various  Salinities  and  Light  Intensities on the Growth Performance of Five Locally Isolated Microalgae Amphidinium carterae, Nephroselmis sp., Tetraselmis sp. (var. red pappas), Asteromonas gracilis and Dunaliella sp. in Laboratory Batch Cultures. J. Mar. Sci. Eng., 9, 1275.
Isti’anah, D., Huda, M.F., & Laily, A.N. (2015). Synedra  sp.  sebagai  Mikroalga  yang Ditemukan  di  Sungai  Besuki  Porong Sidoarjo, Jawa Timur. BIOEDUKASI, 8(1), 57-59.
Israwati,  I.J.  Effendy,  &  A.B.  Patadjai.  (2018). Komposisi  Jenis  dan  Kepadatan  Bentik Diatom  pada  Kolektor  dan  Kaki  atau  Otot Abalon (Haloitis asinina) yang Dipelihara di Kawasan  Sistem  IMTA  (Integrated  Multi Trophic Aqacuture) Out Door. Jurnal Media Akuatika, 3(1), 544-555.
Juneja,  A.,  Ceballos,  R.M.,  &  Murthy,  G.S.
(2013).  Effects  of  Environmental  Factors and Nutrient Availability on the Biochemical  Composition  of  Algae  for Biofuels  Production:  A  Review.  Energies, 6, 4607-4638
Kazbar,  A.  Cogne,  G.,  Urbain,  B.,  Mareca,  H., Le-Gouica,  B.,  Talleca,  J.,  Takache,  H., Ismail,  A.,  &  Pruvost,  J.  (2019).  Effect  of dissolved oxygen concentration on microalgal  culture  in  photobioreactors. Algal Research, 101.
Kazi,  T.G.,  Arain,  M.B.,  Jamali,  M.K.,  Jalbani, N., Afridi, H.I., Sarfraz, R.A., Baig, J.A., & Shah,  A.Q.  (2009).  Assessment  of  Water Quality of Polluted Lake Using Multivariate Statistical  Techniques:  A  Case  Study. Ecotox. Environ. Safe., 72(20), 301-309.
KelloGG,  t.b.  &  K  elloGG,  d.e.  (2002).  Non – marine  and  littoral  diatoms  from  Antarctic and Subantarctic regions. Distribution and updated taxonomy. Diatom Monogr. 1, 1 –
795.
Kep  MENLH.  2004. Keputusan Kantor Menteri
Negara Lingkungan Hidup No.Kep 51/MENLH/I/2004. Tentang Baku Mutu Air Laut. 11 hlm.
Keputusan  Menteri  Kelautan  dan  Perikanan Nomor 90/KEPMEN-KP/2020 tentang Kawasan  Konservasi  Pesisir  dan  Pulau- Pulau Kecil Pulau Randayan dan Perairan sekitarnya di Provinsi Kalimantan Barat.
Kersen, P., K. Jonne, B. Martynas, K. Natalja, & D. Zane. (2011). Epiphytes and Associated
Fauna on the Brown alga  Fucus vesiculosus  in  the  Baltic  and  the  North Seas  in  Relation  to  Different  Abiotic  and Biotic  Variables.  Marine.  Ecology,  32(1), 87-95.
Kordi,  M.G.H.  &  Tancung,  A.B.  (2010). Pengelolaan  Kualitas  Air  dalam  Budidaya Perairan. Rineka Cipta. Jakarta.
Krebs,  C.J.  (1985).  Experimental  Analysis  of Distribution  and  Abundance. 3rd  Ed.  New York: Haper and Row Publisher.
Kumar, D.A., Gopal, T., Harinath, K., & Sibi, G. (2017).  Responses  in  Growth  and  Lipid Productivity  of  Chlorella  Vulgaris  to Different Nitrogen Sources. SOJ. Microbiol. Infect. Dis., 5(2), 1-6.
Kumar, S.S. & Saramma, A.V. (2018). Effect of Salinity and pH Ranges on the Growth and Biochemical Composition of Marine Microalga- Nannochloropsis salina. JAEB, 11(4), 651-660.
Kusmana, C., Setyobudiandi, I., Hariyadi, S., & Sembiring,  A.  (2015).  Sampling  dan Analisis  Bioekologi  Sumber  Daya  Hayati Pesisir  dan  Laut.  Bogor:  IPB  Press.  352 hlm.
Kusumaningtyas, M.A., Bramawanto, R. Daulat, A.  &  Pranowo,  W.S.  (2014).  Kualitas Perairan  Natuna  pada  Musim  Transisi. Depik, 3(1), 10-20
Lestari, R.D.A., Apriansyah, & Safitri, I. (2020).
Struktur Komunitas Mikroalga Epifit Berasosiasi  Pada  Padina  sp.  Di  Perairan Desa  Sepempang  Kabupaten  Natuna. Jurnal Laut Khatulistiwa, 3(2), 40-47
Li, K.Q., Li, M., He, Y.F., Gu, X.Y., Pang, K., Ma, Y.P., & Lu, D.L. (2020). Effects of pH and nitrogen  form  on  Nitzschia  closterium growth  by  linking  dynamic  with  enzyme activity. Chemosphere, 249, 126154.
Lizotte,  M.P.  (2001).  The  contributions  of  Sea Ice  Algae  to  Antarctic  marine  primary production. Amer Zool, 41, 57 –73. Ma’arif, M.C. (2018). Perbandingan Keanekaragaman dan Kelimpahan
Plankton pada Ekosistem Terumbu Karang Alami dengan Terumbu Buatan di Perairan Pasir Putih Situbondo, Program Studi Ilmu Kelautan,  Fakultas  Sains  dan  Teknologi, Universitas  Islam  Negeri  Sunan  Ampel, Surabaya. [Skripsi].
Magdalena,  W.,  Kushadiwijayanto,  A.A.,  & Putra,  Y.P.  (2019).  Struktur  Komunitas Siput  Laut  (Kelas:  Gastropoda)  di  Pesisir Dusun  Karang  Utara,  Pulau  Lemukutan. Jurnal Laut Khatulistiwa, 2(2), 72-78,
Majewska,  R.,  Gambi,  M.C.,  Totti,  C.M., Pennesi,  C.,  &  De  Stefano,  M.  (2012). Growth  form  analysis  of  epiphytic  diatom communities  of  Terra  Nova  Bay  (Ross Sea, Antarctica). Polar Biol.
Mason,  C.F.  (1981).  Biology  Freshwater Pollution. 2nd ed. Longman Scientific and Technical, New York.
McQuatters-Gollop,  A.  (2012).  Challenges  for implementing the Marine Strategy Framework  Directive  in  a  climate  of macroecological  change.  Philos  Trans  R Soc Math Phys Eng Sci, 370, 5636 –5655 Megawati, C., Yusuf, M., & Maslukah, L. (2014). Sebaran Kualitas Perairan Ditinjau dari Zat Hara, Oksigen Terlarut dan pH di Perairan Selatan  Bali  Bagian  Selatan.  Jurnal Oseanografi, 3(2), 142-150.
Militão,  F.P.,  Fernandes,  V.O.,  Bastos,  K.V., Martins,  A.P.,  Colepicolo, P.,  &  Machado, L.P.  (2019).  Nutritional  value  changes  in response  to  temperature,  microalgae mono and mixed cultures. Acta
Limnologica Brasiliensia, 31(17), 1-12
Millán-Oropeza,  A.,  Torres-Bustillos,  L.G.,  &
Fernández-Linares, L. (2015).
Simultaneous  effect  of  nitrate  (NO3-) concentration,  carbon  dioxide  (CO2) supply and nitrogen limitation on biomass, lipids, carbohydrates and proteins accumulation  in  Nannochloropsis  oculata. Biofuel Research Journal, 5, 215-221
Mishra, N., Prasad, S.M., & Mishra, N. (2019). Influence of High Light Intensity and Nitrate Deprivation  on  Growth  and  Biochemical Composition  of  the  Marine  Microalgae Isochrysis  galbana.  Brazilian  Archives  of Biology and Technology, 62, 19180398.
Mulyani,  R.  Widiarti,  &  Wardhana,  W.  (2012). Sebaran Spesies Penyebab Harmful Algal Bloom  (HAB)  di  Lokasi  Budidaya  Kerang Hijau (Perna viridis) Kamal Muara Jakarta Utara  pada  Bulan  Mei  2011.  J.  Akuatika, 3(1), 28-39.
Muñoz, I.L. & Bernard, O. (2021). Modeling the Influence  of  Temperature,  Light  Intensity and  Oxygen  Concentration  on  Microalgal Growth Rate. Processes, 9: 496.
Nasution,  A.,  Widyorini,  N.,  &  Purwanti,  F. (2019).  Analisis  Hubungan  Kelimpahan Fitoplankton dengan Kandungan Nitrat dan Fosfat  di  Perairan  Morosari,  Demak.  J. Maquares., 8(2), 78-86.
Nirmalasari,  R.  (2018).  Analisis  Kualitas  Air Sungai  Sebangau  Pelabuhan  Kereng Bengkiray  Berdasarkan  Keanekaragaman
dan  Komposisi  Fitoplankton. J.  Ilmu  Alam dan Lingkungan, 9(17), 48-58.
Novasaraseta,  N.,  Abidin,  Z.,  &  Junaedi,  E.
(2018).  Keanekaragaman  Phytoplankton di Situ Balong Kambang Desa Pasawahan Kecamatan Pasawahan Kabupaten Kuningan.  J.  Pendidikan  dan  Biologi, 10(1).
Nugroho,  A.  (2006).  Bioindikator  Kualitas  Air. Universitas Trisakti. Jakarta.
Nurcahyanto,  T.,  Muliadi,  &  Nurrahman,  Y.A. (2021).  Struktur  Komunikasi  Terumbu Karang  di  Perairan  Teluk  Melanau  Timur, Pulau
Lemukutan. Jurnal Laut
Khatulistiwa, 4(2), 22-28.
Odum,  E.P.  (1993).  Dasar-Dasar  Ekologi. Gajah Mada Univ Press. Yogyakarta.
Omura, T., Iwataki, M., Borja, V.M., Takayama,
H., & Fukuyo, Y. (2012). Marine Phytoplankton  of  the  Western  Pacific. Kouseisha Kouseikaku Co. Ltd. Japan. 160 hlm.
Patty,  S.I.,  Rizki,  M.P.,  Rifai,  H.,  &  Akbar,  N. (2019).  Kajian  Kualitas  Air  dan  Indeks Pencemaran  Perairan  Laut  di  Teluk Manado  Ditinjau  dari  Parameter  Fisika- Kimia Air Laut. J. Ilmu Kelautan Kepulauan, 2(2), 1-13.
Pello, F.S., Adiwilaga, E.M., Huliselan, N.V., & Damar,  A.  (2014).  Pengaruh  Musim Terhadap Beban Masukan Nutrien di Teluk Ambon Dalam. Jurnal Bumi Lestari, 14(1), 63-73.
Pranata,  N.B.,  Muliadi,  &  Sanova,  A.S.S. (2018). Kondisi Ekosistem Terumbu Karang  di  Teluk  Cina,  Pulau  Lemukutan, Kalimantan Barat. Jurnal Laut Khatulistiwa, 1(2), 9-16.
Pratama,  P.S.,  Wiyanto,  D.B.,  Faiqoh,  E. (2017).  Struktur  komunitas  perifiton  pada lamun  jenis  Thalassia  hemprichii  dan Cymodocea rotundatta di Kawasan Pantai Sanur. J. Mar. Aquat. Sci., 3(1), 123-133.
Purnawan,  S.,  Dewiyanti,  I.,  &  Marman,  T.M. (2016).  Bioekologi Fitoplankton di Laguna Gampong  Pulot  (LGP)  Kabupaten  Aceh Besar. Omni Akuatika, 12(2), 104-112.
Putrianti,  D.P.,  Setyawati,  T.R.,  Yanti,  A.H. (2015).  Keragaman  limno  fitoplankton  di danau Lait Kecamatan Tayan Hilir Kabupaten Sanggau. Protobiont, 4(2), 18- 29.
Rangkuti,  A.M.,  Muhammad,  R.C.,  Ani,  R., Yulma,  &  Hasan,  E.A.  (2017).  Ekosistem Pesisir  dan  Laut  Indonesia.  Bumi  Aksara. Jakarta.
Rangpan, V. (2008). Effects of Water Quality on Periphyton  in  The  Pattani  River,  Yala Municipality, Thailand. Thesis Submitted in Fulfillment  of  The  Requirements  for  The Degree of Doctor of Philosophy, Universitas Sains Malaysia. Malaysia.
Ras,  M.,  Steyer,  J-P.,  &  Bernard,  O.  (2013). Temperature  effect  on  microalgae:  a crucial  factor  for  outdoor  production. Reviews  in  Environmental  Science  and Bio/Technology, 12(2), 153-164.
Rudianto,  A.,  Dewi,  Y.S.K.,  &  Burhanuddin.
(2020). Ecotourism Development of
Snorkeling  and  Diving  Activity  Toward Coral  Reef  Habitats  in  the  Lemukutan
Island of Bengkayang Regency. AQUASAINS:  Jurnal  Ilmu  Perikanan  dan Sumberdaya Perairan, 8(2), 795-808.
Ruhland,  K.,  Paterson,  A.M,  &  Smol,  J.P.
(2008).  Hemispheric ‐ scale  patterns  of climate ‐ related shifts in planktonic diatoms from North American and European lakes. Glob. Chang. Biol., 14(11), 2740-2754.
Safarov, I.V., Abdullaev, A.K., Khujamshukurov, N.A., & Shakirov, Z.S. (2015). Influence of Temperature and CO2 on the Growth and Accumulation  Oil  of  Microalgae.  British Journal of Applied Science & Technology, 10(3), 1-9.
Safdar,  W.,  Shamoon,  M.,  Zan,  X.,  Haider,  J., Sharif,  H.R.,  Shoaib,  M.,  &  Song,  Y. (2017). Growth kinetics, fatty acid composition and metabolic activity changes  of  Crypthecodinium  cohnii  under different nitrogen
source
and concentration. AMB Express., 7(1), 85. Saragih, G.M. & Erizka, W. (2018). Keanekaragaman  Fitoplankton  sebagai Indikator Kualitas Air Danau Sipin di  Kota Jambi. J. Daur Lingkungan, 1(1), 22-28.
Sas, A.A., Turki, A.J., Affan, A., Al-Taisan, W.A., Das,  S.K.,  Su,  S.N.,  &  Cob,  Z.C.  (2021). The  influence  of temperature  and  nutrient concentrations  on  growth  rate,  biomass, Chlorophyll-a, and biochemical compositions  of  Tetraselmis  suecica (Chlorophyta). IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science, 880, 012014
Schaduw,  J.N.W.  &  Ngangi,  E.  (2015).
Karakterisasi  Lingkungan  Perairan  Teluk Talengen  Kabupaten  Kepulauan  Sangihe sebagai  Kawasan  Budidaya  Rumput  Laut Kappaphycus Alvarezii. J. Budidaya Perairan, 3(2), 29-44.
Serra-Maia,  R.,  Bernard,  O.,  Goncalves,  A., Bensalem,  S.,  &  Lopes,  F.  (2016). Influence  of  temperature  on  Chlorella
vulgaris  growth  and  toxicity  rates  in  a photobioreactor. Algal Res., 18, 352 –359
Shabrina,  F.N.,  Saptarini,  D.,  &  Setiawan,  E. (2020).  Struktur  Komunitas  Plankton  di Pesisir  Utara  Kabupaten  Tuban.  J.  Sains dan Seni Its., 9(2).
Simanjuntak,  M.  (2009).  Hubungan  Faktor
Lingkungan Kimia, Fisika terhadap Distribusi  Plankton  di  Perairan  Belitung Timur,  Bangka  Belitung.  Journal  of Fisheries Sciences, 11(1), 31-45.
Siregar,  L.L.,  Hutabarat,  S.,  &  Muskananfola, M.R. (2014). Distribusi Fitoplankton Berdasarkan Waktu dan Kedalaman yang Berbeda  di  Perairan  Pulau  Menjangan Kecil  Karimunjawa.  J.  of  Maquares.,  3(4), 9-14.
Sofiana,  M.S.J.,  Nurrahman,  Y.A.,  Warsidah, Minsas,  S.,  Yuliono, A.,  Safitri,  I., Helena, S.,  &  Risko. (2022).  Community  Structure of  Macroalgae  in  Lemukutan  Island Waters,  West  Kalimantan.  Jurnal  Ilmu Kelautan SPERMONDE, 8(1), 1-8
Suardiani, N.K., Arthana, I.W., & Kartika, G.R.A. (2018).  Produktivitas  Primer  Fitoplankton pada Daerah Penangkapan Ikan di Taman Wisata Alam Danau Buyan, Buleleng, Bali. J. Curr.Trends Aq. Sc., 1(1), 8-15.
Suryono,  T  &  Sudarso,  J.  (2019).  Hubungan Komposisi dan  Kelimpahan  Perifiton dengan  Kualitas Air di  Sungai  dan Danau Oxbow di Palangka Raya pada Kondisi Air Dangkal. LIMNOTEK, 26(1), 23-38.
Suyono,  E.A.,  Haryadi,  W.,  Zusron,  M., Nuhamunada, M., Rahayu, S., & Nugroho, A.P.  (2015).  The  Effect  of  Salinity  on Growth,  Dry  Weight  and  Lipid  Content  of the Mixed Microalgae Culture Isolated from Glagah as Biodiesel  Substrate. Journal of Life Sciences, 9, 229-233.
Tarigas,  M.T.,  Apriansyah,  &  Safitri,  I.  (2020).
Struktur Komunitas Mikroalga Epifit Berasosiasi  Pada  Sargassum  sp.  Di Perairan  Desa  Sepempang  Kabupaten Natuna. Jurnal Laut Khatulistiwa, 3(2), 61- 68.
Tungka,  A.W.,  Haeruddin,  &  Ain,  C.  (2016). Konsentrasi Nitrat dan Ortofosfat di Muara Sungai  Banjir  Kanal  Barat  dan  Kaitannya dengan  Kelimpahan  Fitoplankton  Harmful Alga Blooms (HABs). J. Fisheries Science and Technology, 12(1), 40-46.
Turner, R.E. & Rabalais, N.N. (1991). Changes in  Mississippi  River  water  quality  this century. BioSci., 41, 140
Vassilev, S.V., Vassileva, C.G. (2016).
Composition, properties and challenges of
algae  biomass  for  biofuel  application:  An overview. Fuel, 181, 1 –33.
Vonshak, A., & Torzillo, G. (2004).
Environmental Stress Physiology. In Handbook of Microalgal Culture:
Biotechnology  and  Applied  Phycology; Richmond, A., Ed.; Blackwell Science Ltd.: Hoboken, NJ, USA. pp. 73 –7. Warhate,  S.R.,  Yenkie,  M.K.N.,  Chaudhari, M.D.,  &  Pokale,  W.K.  (2006).  Impacts  of Mining  Activities  on  Water  and  Soil.  J. Environ. Sci. Eng., 48(2), 81-88.
Wetzel,  C.E.,  Beauger,  A.,  &  Ector,  L.  (2019). Cocconeis  rouxii  Héribaud  &  Brun  a forgotten,  but  common  benthic  diatom species  from  the  Massif  Central,  France. BOTANY LETTERS, 1-13.
Widigdo,  B.  &  Wardiatno,  Y.  (2013).  Dinamika Komunitas  Fitoplankton  dan  Kualitas Perairan  di  Lingkungan  Perairan  Tambak Udang  Intensif:  Sebuah  Analisis  Korelasi. Jurnal Biologi Tropis, 13(2).
Wijaya,  N.I.,  Sari,  A.K.A.,  &  Mahmiah  (2022).
Pengaruh  Konsentrasi  Fosfat  dan  Nitrat terhadap  Kelimpahan  Fitoplankton  di Perairan Mangrove Gunung Anyar, Surabaya. J. Pertanian Terpadu, 10(1), 64- 77.
Wind, T. (2007). The Role of Detergents in the Phosphate-Balance  of  European  Surface Waters;  European  Water  Management. Online: Hennef, Germany, 2007; pp. 1 –19 Witkowski,  A.,  Lange-Bertalot,  H.,  &  Metzeltin, D. (2000). Diatom Flora  of Marine Coasts I. Koeltz Scientific Books. Germany.
Xin,  L.,  Hong-ying,  H.,  Ke,  G.,  &  Ying-xue,  S. (2010).  fects  of  different  nitrogen  and phosphorus concentrations on the growth, nutrient uptake, and lipid accumulation of a freshwater  microalga  Scenedesmus  sp. Bioresour. Technol., 101, 5494 –5500. Yaakob, M.A., Mohamed, R.M.S.R., Al-Gheethi, A.,  Ravishankar,  G.A.,  &  Ambati,  R.R. (2021). Influence of Nitrogen and Phosphorus on Microalgal Growth, Biomass, Lipid, and Fatty Acid Production: An Overview. Cells: 10, 393.
Yamaji.  (1984).  Illustration  of  the  Marine Plankton  of  Japan.  Hoikusho,  Osaka, Japan. 369p.
Yu, H., Kim, J., Rhee, C., Shin, J., Shin, S.G., & Lee,  C.  (2022).  Effects  of  Different  pH
Control Strategies on Microalgae Cultivation  and  Nutrient  Removal  from Anaerobic Digestion Effluent. Microorganisms, 10, 357.
Yuliana. (2014). Keterkaitan antara Kelimpahan
Zooplankton  dengan  Fitoplankton  dan Parameter  Fisika  -  Kimia  di  Perairan
Jailolo, Halmahera Barat. J. Maspari, 6(1), 25-31. Yuliana. (2015). Distribusi dan Struktur Komunitas Fitoplankton di Perairan Jailolo, Halmahera Barat. J. Akuatika, 6(1), 41 ‐ 48.