Journal of Parasite Science Vol.4 No.1 Maret 2020
eISSN : 2656 ‐ 5331 , pISSN : 2599 ‐ 0993
Identification of Protozoa in The Blood and Digestive Tract on Water Monitor Lizard,, 31
Identification of Protozoa in The Blood and Digestive Tract on Water Monitor Lizard ( Varanus salvator )
Identifikasi Protozoa pada Darah dan Saluran Pencernaan Biawak Air ( Varanus salvator ) 1) Azizah Bilqis Nurkarimah, 2) Mufasirin, 3) Ratna Damayanti, 2) Lucia Tri Suwanti, 4) Boedi Setiawan, 2) Endang Suprihati
1) Student, Faculty of Veterinary Medicine, Universitas Airlangga,
2) Department of Veterinary Parasitology, Faculty of Veterinary Medicine, Universitas Airlangga,
3) Department of Basic Veterinary Medicine, Faculty of Veterinary Medicine, Universitas Airlangga,
4) Department of Veterinary Clinic,Faculty of Veterinary Medicine, Universitas Airlangga.
Received: 27 ‐ 06 ‐ 2020, Accepted: 27 ‐ 06 ‐ 2020, Published Online: 29 ‐ 06 ‐ 2020 Co ‐ Author email : mufasirin@fkh.unair.ac.id

## Abstract
The aim of this research is to identify the variaous of protozoa in the bloodanddigestive tract on water monitor lizard ( Varanus salvator ) was captured in Sidoarjo, East Java. This research was taken on March until June 2019. This research used a non ‐ experimental method through an observation study. As many as 50 water monitor lizard were used this research and examined at the Laboratory of Parasitology, Faculty of Veterinary Medicine, Universitas Airlangga.The samples of this research were made in thin blood smear using Giemsa stain, while fecal examination using native method, sucrose flotation, and modified Ziehl ‐ Neelsen stain.The results showed that two various of protozoa found were single infection. Observations on the blood was obtained Haemogregarina sp. (14%) and observations of feces obtained Eimeria sp. (2%). The conclusion of this research indicate that type of protozoa was Haemogregarina sp. and Eimeria sp. were found on water monitor lizard( Varanus salvator ).
Keywords: Eimeria sp., Haemogregarina sp., Varanus salvator , water monitor lizard.
Pendahuluan
Biawak air ( Varanus salvator ) merupakan salah satu satwa endemik Indonesia yang diminati sebagai hewan peliharaan eksotik di dunia. Biawak dapat ditemukan hampir di seluruh kepulauan Indonesia. Keberadaan biawak yang mudah ditemukan di alam bebas memberikan kesempatan potensi eksploitasi oleh manusia. Pemelihara hewan kesayangan khususnya dari golongan reptil sebagian besar kurang memahami tata cara pemeliharaan yang benar (Dalton dkk., 1995). Sebagian masyarakat mengkonsumsi daging biawak. Biawak yang ditangkap di alam bebas tidak menjamin bebas dari penyakit. Keadaan tersebut dapat menim ‐ bulkan risiko penyebaran penyakit, termasuk penyakit parasit pada reptil maupun pemeli ‐ hara. Beberapa faktor yang dapat mendukung penyebaran dan berkembangnya penyakit antara lain makanan yang tidak sehat, lingkungan yang tercemar, danperilakuhidup manusia (Natadisastra dan Agoes, 2009). Salah satu parasit yang dapat menginfeksi biawak
adalah protozoa. Protozoa tersebut dapat menginfeksi darah maupun saluran pencernaan. Berdasarkan laporan dari Hanafiah dkk. (2018), diduga terdapat banyak parasit yang dapat menginfeksi biawak air.Mader (1996) menemukan beberapa parasit khususnya
protozoa pada darah dan saluran pencernaan reptil. Jenis protozoa yang dapat menginfeksi biawak antara lain, Cryptosporidium sp. (Prabayuda, 2017), Entamoebainvadens (Chia dkk ., 2009), Giardia sp. (Upton and Zien, 1997), Eimeria ramadanensis (Abdel ‐ Aziz dkk., 2019), dan Haemogregarina sp. (Cook dkk . , 2016). Beberapa protozoa yang ditemukan pada biawak bersifat zoonosis, sehingga dapat menyebabkan penyakit pada manusia seperti cryptosporidiosis dan giardiasis. Manusia memanfaatkan biawak untuk memenuhi kebutuhan hidup, seperti meng ‐ gunakan kulit sebagai perhiasan, daging untuk konsumsi dan obat, serta untuk peliharaan (Shine dkk., 1996). Interaksi antara manusia
Available at: https://e ‐ journal.unair.ac.id/JoPS
32 Identification of Protozoa in The Blood and Digestive Tract on Water Monitor Lizard,,
dengan biawak yang ditangkap liar memiliki potensi terjadi penularan parasite (zoonosis).
Penularan parasite yang bersifat zoonosis berkaitan erat dengan kebersihan dan sanitasi.
Parasitit yang bersifat zoonosisjika menginfeksi manusia pada umumnya tidak menimbulkan gejala klinis yang jelas, sehingga seringkali diabaikan. Infeksi parasit yang ringan pada hewan umumnya tidak menimbulkan gejala klinis, tetapi dapat mengakibatkan kematian apabila terjadi infeksi berat (Sopha, 2018). Penelitian tentang biawak air dan identifikasi agen penyebab penyakitnya masih jarang dilaporkan (Wilson, 2010).
Pada penelitian ini akan dilakukan identifikasi protozoa pada darah dan saluran pencernaan biawak air yang didapat di pemotongan Sidoarjo dengan pemeriksaan mikroskopik. Biawak air dapat digunakan sebagai model untuk mempelajari berbagai macam protozoa yang menyerang jenis bangsa varanidae yang lain. Hasil penelitian ini juga dapat digunakan sebagai referensi potensi penyebaran penyakit parasitik pada biawak yang bersifat zoonosis.

## Metode
Bahan dan MateriPenelitian Bahan penelitian pemeriksaan darah menggunakan sampel darah biawak, metanol absolut, pewarna Giemsa 20%, akuades dan minyak emersi.Pemeriksaan feses dibutuhkan bahan berupa sampel feses biawak, larutan kalium bikromat,, larutan sukrosa 40%, akuades, carbol fuchsin 0,3%, asam alkohol 3% , malachite green 0,3 %. Pemeriksaan darah dibutuhkan alat
berupa kaca obyek, kaca penutup, kotak penyimpanan, staining jar , tabung EDTA, dan mikroskop. Alat penelitian pada pemeriksaan feses menggunakan pot sampel, kertas label, lidi atau pengaduk, saringan teh, pipet, kaca obyek, kaca penutup, mikroskop, tabung sentrifus, alat sentrifus, dan rak tabung. Sampel penelitian
Sampel penelitian adalah 50 ekor biawak masing ‐ masing berupa sampel darah dan feses yang di dapat dari tempat pemotongan biawak di Sidoarjo.
Pemeriksaan darah metode ulas darah dengan pewarnaan Giemsa Sampel darah diambil dari darah yang mengalir setelah biawak dipotong dan ditampung menggunakan tabung EDTA 3 ml.
Sampel darah yang sudah diambil diteteskan ke satu kaca obyek dengan posisi mendatar. Kaca obyek dipegang dengan ibu jari dan telunjuk tangan kiri. Kemudian kaca obyek lain yang ujungnya rata dipegang dengan tangan kanan, kaca obyek pada tangan kanan disentuhkan pada tetesan darah sehingga darah pada kaca obyek yang berada di tangan kiri menyebar pada ujung kaca obyek tangan kanan. Kaca obyek pada tangan kanan dimiringkan dengan kemiringan 30 ‐ 45 o terhadap kaca obyek pada tangan kiri, dan kaca obyek pada tangan kanan didorong sehingga darah terhapus membentuk hapusan tipis. Hapusan darah dikeringkan dengan cara diangin ‐ anginkan pada suhu kamar. Kemudian hapusan darah diberi label. Cara membuat pewarnaan ulas darah dengan pewarnaan Giemsa diawali dengan memfiksasi hapusan darah ke dalam larutan methanol absolut selama 3 menit. Kemudian hapusan darah dimasukkan ke dalam larutan Giemsa 10 – 20 % selama 30 menit. Preparat diangkat dan dicuci dengan air mengalir sampai air cucian bening. Ulas darah dikeringkan dengan meletakkan kaca obyek posisi berdiri pada bidang miring atau diangin ‐ anginkan (Suwanti dkk., 2011).

## MetodeNatif
Akuades diteteskan di atas kaca obyek sebanyak dua tetes. Sampel feses diambil menggunakan tusuk gigi dan oleskan di atas kaca obyek yang telah ditetesi akuades. Sampel dan akuades dihomogenkan menggunakan tusuk gigi. Setelah feses dan akuades homogen, campuran homogen tersebut ditutup dengan kaca penutup. Preparat diperiksa di bawah mikroskop dengan perbesaran 400x (Taylor dkk., 2007).
Metode Apung Sukrosa ( Sucrose Flotation Method ) Feses biawak sebanyak 3 gram, ditambah ‐ kan air sehingga volume 15 ml. Larutan diaduk sehingga homogen dan didiamkan selama 15 menit. Larutan disaring dan disentrifugasi dengan kecepatan 1800 rpm selama 10 menit. Endapan dibiarkan dan supernatan dibuang. Sesuai dengan metode (Dubey, 1972), hasil endapan di tambahkan dengan larutan sukrosa 40% hingga 30 ml. Setelah dicampur, larutan kembali disentrifugasi selama 10 menit. Supernatan yang terbentuk diambil sebanyak 1 cc pada setiap tabung kemudian diperiksa di bawah mikroskop perbesaran 400x.
Journal of Parasite Science Vol.4 No.1 Maret 2020
eISSN : 2656 ‐ 5331 , pISSN : 2599 ‐ 0993
Identification of Protozoa in The Blood and Digestive Tract on Water Monitor Lizard,, 33
Metode Pewarnaan Modifikasi Tahan Asam ( ModifiedZiehl Neelsen ) Sediaan sampel diletakkan dengan bagian apusan feses menghadap ke atas pada rak pengecatan dengan jarak 1 jari antara satu sediaan dengan sediaan lain. Sediaan difiksasi dengan metanol absolut. Carbol fuchsin 0,3% dituang melalui kertas saring sampai menutupi seluruh permukaan sediaan dan didiamkan hingga kering. Sesudah kering sediaan dibilas dengan air suling secara hati ‐ hati. Selanjutnya sediaan dituangi dengan asam alkohol 3% sampai semua warna merah fuchsin luntur. Kemudian sediaan dibilas kembali dengan air mengalir. Sediaan yang sudah terbilas dituang malachite green 0,3% selama 10 ‐ 20 detik. Sediaan dibilas dengan air mengalir secara hati ‐ hati dan dikeringkan pada rak pengering. Pemeriksaan sediaan menggunakan mikroskop dengan perbesaran 400x dan 1000x (Beauty dkk., 2014).
Analisis Data
Data yang diperoleh dari hasil identifikasi protozoa pada darah dan saluran pencernaan biawak air disajikan secara deskriptif.

## Hasil
Pemeriksaan protozoa pada 50 ekor biawak air yang didapat dari tempat pemotongan biawak di Sidoarjo selama bulan Maret ‐ Juni 2019 ditemukan dua macam jenis protozoa antara lain satu genus protozoa darah yaitu Haemogregarina sp., dan satu genus protozoa dari saluran pencernaan yaitu Eimeria sp.
Pada pemeriksaan ulas darah pada biawak terlihat Haemogregarina sp. berbentuk lonjong seperti sosis, berwarna pucat dengan inti lebih gelap, terletak di dalam sitoplasma eritrosit dan mendesak inti eritrosit hingga ke tepi. Haemogregarina sp. ditemukan pada tujuh ekor dari 50 ekor biawak yang diamati (14%). Gambaran Haemogregarina sp. dapat dilihat pada Gambar 1.
Pemeriksaan feses biawak melalui metode natif didapatkan ookista Eimeria sp. yang telah bersporulasi dengan empat sporokista masing ‐ masing berisi dua sporozoit, berbentuk ovoid, dan memiliki dinding yang berbatas jelas. Ukuran ookista Eimeria sp. yang ditemukan bervariasi. Eimeria sp. ditemukan pada satu ekor dari 50 ekor biawak yang diamati (2%). Gambaran Eimeria sp. dapat dilihat pada
Gambar 2.
Gambar 1. Haemogregarina sp. pada pemeriksa ‐ an mikroskopis perbesaran 1000x. EN:Eritrosit normal, IH: Inti hospes, IP: Inti Protozoa.
Gambar 2. Eimeria sp. pada pemeriksaan mikroskopis perbesaran 400x. SK: Sporokista,
D: Dinding Ookista.

## Pembahasan
Berdasarkan hasil penelitian pada 50 ekor biawak yang diambil dari tempat pemotongan biawak di Sidoarjo, didapatkan tujuh ekor biawak positif (14%) Haemogregarina sp. dan satu ekor biawak positif Eimeria sp. (2%), sehingga jumlah biawak yang terinfeksi protozoa bersifat tunggal sebanyak 8 ekor (16%). Jumlah tersebut lebih tinggi daripada penelitian yang dilakukan sebelumnya oleh Hanafiah dkk. (2018) di Banda Aceh yang melaporkan tidak ditemukan adanya protozoa pada biawak. Perbedaan tersebut kemungkinan disebabkan karena perbedaan kondisi wilayah, dimana biawak hidup, umur, serta waktu penelitian yang berbeda pada biawak yang diteliti. Menurut Wilson and Carpenter (1996), kerentanan hewan terhadap parasit dapat disebabkan antara lain, kapasitas penangkaran, suhu lingkungan, kebersihan, musim, jumlah parasit, ketersediaan hospes, serta gizi dan umur hospes.
EN IH IP SK D
Available at: https://e ‐ journal.unair.ac.id/JoPS
34 Identification of Protozoa in The Blood and Digestive Tract on Water Monitor Lizard,,
Haemogregarina sp. terlihat pada
pemeriksaan ulas darah dengan pewarnaan Giemsa. Gamont Haemogregarina sp. tampak berbentuk lonjong seperti sosis yang terletak di dalam eritrosit, parasit berwarna pucat dengan inti gelap keunguan, mendesak inti eritrosit hingga ke tepi. Karakteristik tersebut sesuai dengan penelitian yang dilakukan Tomédkk. (2018), Haemogregarina sp. merupakan parasit intraeritrositik yang berbentukmemanjang dengan inti parasit berwarna gelap, dan parasit mendesak inti eritrosit. Hasil pengukuran
Haemogregarina sp. pada penelitian ini adalah 11,38 x 2,45 µm. Pengukuran tersebut sesuai dengan rata ‐ rata ukuran gamont pada penelitian Rabie and Hussein (2014), yaitu (10 − 12,1) × (2,2 − 4,4) µm. American Association of Zoo Veterinarians (AAZV) menyebutkan bahwa Haemogregarina sp. ditularkan melalui gigitan vektor, sehingga kontak langsung antar hewan bukan merupa ‐ kan faktor risiko infeksi (AAZV, 2013). Tungau dari genus Ophionyssus berperan sebagai vektor dalam siklus hidup Haemogregarina sp. (Bannert dkk., 1995). Habitat biawak pada lingkungan yang kotor memungkinkan biawak mudah terinfestasi ektoparasit. Musim pada saat pengambilan sampel juga berpengaruh pada penyebaran parasit. Pengambilan sampel dilakukan pada bulan Maret ‐ Juni saat musim hujan, sehingga kelembaban di daerah pemotongan biawak Sidoarjo menjadi tinggi.
Kelembaban yang tinggi merupakan faktor yang cocok untuk perkembangan parasit (Subronto, 2006).
Infeksi Haemogregarina sp. pada reptil tidak dapat menular terhadap manusia. Reptil yang terinfeksi Haemogregarina sp. umumnya tidak menimbulkan gejala klinis, namun reptil dengan tingkat parasitemia yang tinggi dapat mengalami anemia, lemas dan anoreksia (AAZV, 2013).
Selain Haemogregarina sp., spesies
protozoa yang ditemukan adalah Eimeria sp. Di dalam penelitian Abdel ‐ Aziz dkk . (2019), ookista Eimeria sp. dapat diidentifikasi dengan ciri terdapat empat sporokista, dan masing ‐ masing sporokista mengandung dengan dua sporozoit, berbentuk ovoid, memiliki mikropil, ukuran ookista bervariasi (23,7–30,5) × (16,7– 24,6 ) µm. Sporulasi terjadi dalam waktu 72 jam pada suhu kamar. Karakteristik tersebut sesuai dengan Eimeria sp. yang ditemukan melalui pemeriksaan natif pada penelitian ini, yaitu tampak ookista yang sudah bersporulasi berisi empat sporokista, ukuran 31,96 ‐ 32,25 µm, tanpa
mikropil, dan memiliki bentuk ovoid.Perbedaan ukuran dan keberadaan mikropil kemungkinan disebabkan karena perbedaan jenis Eimeria pada biawak (Abdel ‐ Aziz, 2019).
Penyebaran Eimeria sp. bergantung dengan suhu, kelembaban, manajemen
perawatan dan kebersihan lingkungan. Penelitian ini dilakukan ketika musim hujan dimana suhu lingkungan rendah dan kelembaban tinggi, sehingga kemungkinan
timbul adanya infeksi Eimeri a sp. pada biawak. Manajemen perawatan dan kebersihan
lingkungan biawak tidak terkontrol karena biawak yang digunakan pada penelitian ini berasal dari tangkapan liar. Prevalensi Eimeria sp. yang rendah berkaitan pada faktor ‐ faktor seperti, suhu, kelembaban, dan manajemen lingkungan, sehingga perlu dilakukan penelitian lebih lanjut terhadap infeksi Eimeria sp. pada biawak. Eimeria sp.
merupakan penyebab
coccidiosis pada reptil dan tidak bersifat zoonosis terhadap manusia. Coccidiosis yang disebabkan infeksi Eimeria sp. pada reptil biasanya tidak patogen, namun faktor predisposisi seperti stres, pakan, gangguan pencernaan, dan infeksi sekunder membuat protozoa tersebut patogen. Reptil yang menderita coccidiosis berat biasanya ditandai dengan anoreksia, penurunan berat badan, dan diare yang disertai darah (Ra ś‐ Nory ń ska and Sokó ł , 2015). Pada penelitian ini tidak ditemukan protozoa yang bersifat zoonosis seperti, Cryptosporidium sp. dan
Giardia
sp.
Pemeriksaan Cryptosporidium sp. pada penelitian ini dilakukan dengan menggunakan metode apung sukrosa dan modifikasi pewarna ‐ an tahan asam ( Modified Ziehl ‐ Neelsen) pada feses biawak. Cryptosporidium sp. yang memiliki ukuran kecil kemungkinan menjadi penyebab terlewatkannya identifikasi saat diperiksa menggunakan mikroskop, sehingga diperlukan metode lanjutan yang lebih mendalam seperti PCR ( Polymerase Chain Reaction )(Robinson dkk., 2008). Hasil identifikasi Giardia sp. yang dilaku ‐ kan melalui metode natif pada feses biawak adalah negatif. Pemeriksaan melalui metode yang lain diperlukan untuk menemukan Giardia sp. pada biawak, salah satunya dengan melakukan swab mukosa saluran pencernaan bagian bawah kemudian diperiksa mengguna ‐ kan mikroskop (Ra ś‐ Nory ń ska and Sokó ł , 2015). Uji IFA ( Immunofluorescence Assay ) dapat digunakan untuk mengidentifikasi kista Giardia
Journal of Parasite Science Vol.4 No.1 Maret 2020
eISSN : 2656 ‐ 5331 , pISSN : 2599 ‐ 0993
Identification of Protozoa in The Blood and Digestive Tract on Water Monitor Lizard,, 35
sp., karena uji tersebut memiliki spesifisitas dan sensitivitas yang tinggi dalam mendeteksi Giardia sp. (El ‐ Nahas dkk . , 2012).
Kesimpulan
Berdasarkan hasil penelitian, maka dapat diambil kesimpulan bahwa jenis protozoa yang ditemukan pada
biawak air adalah Haemogregarina sp. dan Eimeria sp.
Daftar Pustaka [AAZV] American Association of Zoo
Veterinarians. 2013. Haemogregarines of Reptiles.www.aazv.org/resource/resmgr/I DM/IDM_Hemogregarines_of_Reptil.pdf. [8 Juli 2019] Abdel ‐ Aziz A, Abou ‐ Senna FM, Abdel ‐ Gawad
MA and El ‐ Nour MFA. 2019. A new species of Eimeria (Apicomplexa: Eimeriidae) from the desert monitor, Varanus griseus
griseus (Lacertilia: Varanidae). www.researchgate.net/publiccation/ ‐
334224688. [8 Agustus 2019].
Bannert B, Lux E and Sedlaczek J. 1995. Studies on endoand ectoparasites of Canarian
Lizards. Sci.Herp.1995: 293–296.Beauty, E.O., U.N. Uchechukwu, S.U. Chukwuneke and O.O. Francis. 2014. Comparative diagnostic techniques for Cryptosporidium infection. J. Molecules. 19: 2674 ‐ 2683.
Chia MY, Jeng CR, Hsiao SH, Lee AH, Chen CY and Pang VF. 2009. Entamoeba invadens myositis in a common water monitor lizard ( Varanus salvator ). Vet. Pathol.46: 673–676.
Cook CA, Netherlands EC and Smit NJ. 2016. Redescription, molecular characteri ‐ sation and taxonomic re ‐ evaluation of a unique African monitor lizard haemogregarine Karyolysus paradoxa
(Dias, 1954) n. comb. (Karyolysidae). ParasiteVect. 9(1): 347.
Dalton C, Hoffman R and Pope J. 1995. Iguana ‐ associated salmonellosis inchildren. 14:319 ‐ 329.
Dubey JP. 1972. A simplified method for isolation of Toxoplasma gondii from the faces ofcats. J. Parasitol. 58: 1005 ‐ 1007.
El ‐ Nahas HA, Salem DA, El ‐ Henawy AA, El ‐ NimrHI,Abdel ‐ GhaffarHA and El ‐ MeadawyAM. 2013. Giardia diagnostic methods in human fecal samples: A
comparative study. Clinic. Cytomet.
84B(1): 44 ‐ 49.
Hanafiah M, Alfiansyah HD dan Sayuti A. 2018. Identifikasi parasit pada biawak air
( Varanus salvator ). Jurnal Sain Veteriner. 36(1): 24 ‐ 31. Mader DR. 1996. Section IV Medicine Parasitology. Di dalam: Mader DR, editor Reptile Medicine and Surgery. USA. W.B. Saunders. Company: 343 ‐ 364. Natadisastra D dan Agoes R. 2009. Parasitologi Kedokteran Ditinjau dari Organ Tubuh yang Diserang. EGC. Jakarta. Prabayuda FD. 2017. Identifikasi Cryptosporidium sp. pada Biawak Air ( Varanus salvator ) yang didapat di
Surabaya [Tesis]. Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Airlangga.
Rabie SAH and Hussein AA. 2014. A description of haemogregarina species naturally infecting white ‐ spotted gecko ( Tarentola annularis ) in Qena, Egypt. 44(2): 351 ‐ 358.
Ra ś‐ Nory ń ska M and Sokó ł R. 2015. Internal parasites of reptiles. Ann. Parasitol. 61(2):
115 ‐ 117.
Robinson G, ElwinK and ChalmersRM. 2008. Unusual Cryptosporidium Genotypes in Human Cases of Diarrhea. Emer. Infect. Dis. 14: 1800 ‐ 1802.
Shine R, HarlowPS, KeoghJS and Boeadi. 1996. Commercial harvesting of giant lizards: the biology of water monitors Varanus salvator in Southern Sumatra. Biol. Cons.
77: 125 ‐ 134.
Sopha P. 2018. Risiko Penularan Zoonosis Parasitik pada Mahasiswa Kedokteran
Hewan.https://www.researchgate.net/publ ication/323768393. [8 Agustus 2019].
Subronto. 2006. Penyakit Infeksi Parasit dan Mikroba pada Anjing dan Kucing. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta. Suwanti LT, Lastuti NDR, Mufasirin dan
Suprihati E. 2011. Petunjuk dan Laporan Praktikum Ilmu Penyakit Protozoa. Departemen Parasitologi Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga. Surabaya Taylor MA, CoopRL and WallRL. 2007. Veterinary Parasitology. 3 rd . Blackwell Publishing Ltd. UK. p. 798.
Available at: https://e ‐ journal.unair.ac.id/JoPS
36 Identification of Protozoa in The Blood and Digestive Tract on Water Monitor Lizard,,
Tomé B, Pereira A, Harris DJ, Carretero MA and Perera A. 2019. A paradise for parasites? Seven new haemogregarine species infecting lizards from the Canary Islands. J. Parasitol. 1–12.
Upton SJ and Zien CA. 1997. Description of a Giardia varani ‐ like flagellate from a water monitor, Varanus salvator , from Malaysia. J. Parasitol. 83(5): 970
Wilson B. 2010. Lizards. Di dalam: Ballard BM, Cheek R, editor. Exotic Animal Medicine forthe Veterinary Technician. 2 nd . Blackwell Publishing Professional. UK. p.
76 ‐ 84, 87 ‐ 90,104 ‐ 106. Wilson SC and Carpenter JW. 1996. Endoparasitic diseases of reptiles. Seminars Avian Exo. PetMed. 5: 64 ‐ 74.