Jurnal Hasil Penelitian Bidang Ilmu Akuakultur ISSN 2503-4766 (Print) ISSN 2597-8837 (Online) DOI 10.33087/akuakultur.v9i1.204
Publisher by : Program Studi Budidaya Perairan Fakultas Pertanian Universitas Batanghari
Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning ( Ipomoea batatas L )
Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang ( Clarias gariepinus )

## Liana, Agustina, dan *Heru Kusidanto
Jurusan Budidaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Mulawarman Jl. Gunung Tabur, Kampus Gunung Kelua, Samarinda, Kalimantan Timur, 75123 *e-mail korespondensi: kusherudianto@gmail.com
Abstract. Feeding  management  is  a  very  important  factor  in  fish  farming  activities.  Adding  prebiotics  to  feed  is  an  effort  to increase the availability of nutrients in feed and fish health. This study aimed to determine the effect of sweet potato flour in feed on hematological parameters and nutritional coefficient values of sangkuriang catfish. This study used a completely randomized design  (CRD)  with  4  treatments  3  repetitions  with  the  dose  of  each  treatment,  namely  treatment  1  (0%  sweet  potato  flour  in feed), treatment 2 (1% sweet potato flour in feed), treatment 3 (2% sweet potato flour in feed), and treatment 4 (3% sweet potato flour  in  feed).  Maintenance  is  carried  out  in  a  plastic  container  with  a  volume  of  25  liters  of  water  for  30  days.  Feeding according to treatment was carried out three times a day in the morning, afternoon and evening using the at satiation method. The results showed that the provision of sweet potato flour in feed could increase the hematological parameters and nutritional coefficient values and gave the best value at P3 for the hemoglobin level parameter, namely 8.40; hematocrit level with a value of 79.01%; total leukocytes with a value of 75.23 × 103 cells/mm3 and total erythrocytes with a value of 2.89 × 106 cells/mm3 . In the nutritional coefficient value parameter, the best results are found in P3 with a total of 0.82.
Keywords: Hematologist, Weight growth, Sangkuriang catfish
Abstrak .  Manajemen  pemberian  pakan  merupakan  faktor  yang  sangat  penting  dalam  kegiatan  budidaya  ikan.  Penambahan prebiotik  ke  dalam  pakan  merupakan  salah  satu  upaya  untuk  meningkatkan  ketersediaan  nutrien  dalam  pakan  dan  kesehatan ikan.  Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh pemberian tepung ubi jalar kuning dalam pakan terhadap parameter hematologi  dan  nilai  NVC  ikan  lele  sangkuriang.  Penelitian  ini  menggunakan  rancangan  acak  lengkap  (RAL)  dengan  4 perlakuan 3 ulangan dengan dosis masing-masing perlakuan yaitu perlakuan 1 (P1, 0% tepung ubi jalar dalam pakan), perlakuan 2 (P2, 1% tepung ubi jalar dalam pakan), perlakuan 3 (P3, 2% tepung ubi jalar dalam pakan), dan perlakuan 4 (3% tepung ubi jalar dalam pakan). Pemeliharaan dilakukan dalam wadah plastik dengan volume air 25 liter selama 30 hari. Pemberian pakan sesuai  perlakuan  dilakukan  tiga  kali  sehari  pada  pagi,  siang,  dan  sore  hari  dengan  metode  ad  satiation.  Hasil  penelitian menunjukkan  bahwa  pemberian  tepung  ubi  jalar  dalam  pakan  dapat  meningkatkan  parameter  hematologi  dan  nilai  NVC  dan memberikan  nilai  terbaik  pada  P3  untuk  parameter  kadar  hemoglobin  yaitu  8,40;  kadar  hematokrit  dengan  nilai  79,01%;  total leukosit dengan nilai 75,23 × 10 3 sel/mm 3 dan total eritrosit dengan nilai 2,89 × 10 6 sel/mm 3 . Pada parameter nilai NVC, hasil terbaik terdapat pada P3 dengan jumlah 0,82.
Kata Kunci: Ubi Jalar, Prebiotik, Hematologi, Lele Sangkuriang

## PENDAHULUAN
Ikan lele sangkuriang ( Clarias gariepinus ) adalah salah satu ikan air tawar yang banyak dibudidayakan oleh masyarakat.  Meningkatnya  permintaan  konsumen  membuat  pembudidaya  lele  sangkuriang  menerapkan  sistem budidaya  ikan  intensif.  Pada  sistem  budidaya  intensif,  padat  tebar  yang  tinggi  serta  jumlah  pakan  yang  diberikan dalam  jumlah  yang  banyak  dapat  menyebabkan  menurunnya  kualitas  air  dan  daya  tahan  tubuh  ikan  hal  ini  bisa menjadi faktor penyebab stress dan kematian ikan.
Pakan  merupakan  salah  satu  komponen  dalam  budidaya  ikan  yang  sangat  besar  peranannya,  baik  itu berfungsi  sebagai  penentu  kesehatan  ikan  dan  juga  sebagian  besar  biaya  produksi  pada  ikan  adalah  biaya  pakan. Manajemen  pemberian  pakan  memiliki  pengaruh  yang  sangat  nyata  terhadap  target  produksi  ikan  yang dibudidayakan  dan  menuntut  para  pembudidaya  untuk  menambah  biaya  produksi  dalam  pembelian  pakan  ikan (Elpawati  et  al.,  2015).  Pemberian  pakan  dengan    dosis  yang  optimum  dapat  meningkatkan  kesehatan  ikan  dan menekan penurunan kualitas lingkungan budidaya. Saat penyediaan pakan tidak jarang para pembudidaya melakukan kombinasi-kombinasi atau melakukan campuran antara pakan buatan dengan bahan lainnya.
Prebiotik  adalah  salah  satu  solusi  untuk  mengatasi  permasalahan  tersebut,  prebiotik  yang  sebelumnya didefinisikan  sebagai  bahan  makanan  yang  tidak  dapat  dicerna  yang  secara  menguntungkan  mempengaruhi  inang dengan  secara  selektif  merangsang  pertumbuhan  dan/atau  aktivitas  bakteri  kolon  kini  telah  didefinisikan  sebagai bahan  makanan  yang  difermentasi  secara  selektif  yang  meningkatkan  kesehatan  inang  dengan  menargetkan  bahan makanan asli (Gibson dan Roberfroid, 1995). Pada penelitian Haryati & Supriyati (2010)  ubi jalar mengandung oligosakarida  tidak  dicerna  (non-digestible  oligosaccharides  [NDOs])  diantaranya  rafinosa  dan  sukrosa  yang
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)
berfungsi sebagai prebiotik.
Lele  Sangkuriang  sebagai  komoditas  perikanan  dengan  nilai  ekonomis  tinggi  belum  banyak  yang dibudidayakan secara benar sehingga banyak sekali hal yang harus diteliti dalam kaitannya dengan teknik budidaya agar  kegiatan  budidaya  yang  dilakukan  dapat  berhasil.  Untuk  meningkatkan  produktivitas  diperlukan  upaya  yang tepat agar mencapai produksi yang optimal. Salah satu upaya yang dapat dilakukan adalah dengan pemanfaatan ubi jalar sebagai prebiotik.
Penelitian  tentang  pemberian  tepung  ubi  jalar  kuning  sebagai  prebiotik  pada  ikan  lele  sangkuriang  belum dilakukan  sehingga  perlu  upaya  penelitian  potensi  tepung  ubi  jalar  kuning  sebagai  prebiotik  pada  ikan  lele sangkuriang  sebagai  salah  satu  diantara  ikan  yang  banyak  dibudidayakan  perlu  dilakukan  terhadap  kesehatan ikan. Kesehatan ikan dapat dilihat dari beberapa parameter diantaranya adalah parameter hematologi, imunitas seluler serta dapat  dilihat  melalui Nutrition  Value  Coefficient (NVC).  Pada  penelitian  ini  dianalisis pengaruh  pemberian  tepung ubi jalar kuning terhadap parameter hematologi, sistem imun serta NVC ( Nutrition Value Coefficient ).

## BAHAN DAN METODE

## Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian  ini  dilaksanakan  selama  satu  bulan  yaitu  pada  tanggal  28  Januari  –  28  Februari  2023  di Laboratorium  Mikrobiologi  dan  Bioteknologi  Akuakultur  Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan  Universitas Mulawarman.

## Alat dan Bahan Penelitian
Daftar alat yang digunakan dalam penelitian ini ditampilkan pada Tabel 1.
Tabel 1. Alat yang digunakan pada penelitian No Nama Alat Fungsi 1. Mikroskop pengamatan darah 2. Hemocytometer dan Haemometer sahli untuk mengukur hematokrit darah 3. Tabung mikrokapiler untuk mengukur hematokrit darah 4. Skala Hematokrit untuk membaca persentase hematokrit 5. Kamar hitung Neubauer untuk menghitung eritrosit dan leukosit 6. Tabung eppendorf untuk wadah penyimpan darah 7. Pipet eritrosit Untuk Pengamatan total eritrosit 8. Pipet Leukosit Untuk pengamatan total leukosit 9. Pipet sahli Untuk menghitung hemoglobin 10. Ember Untuk wadah penampungan air 11. Pipet tetes Untuk mengambil larutan 12. Akuarium 30x30x40 cm Untuk wadah pemeliharaan ikan 13. Penggaris Untuk mengukur panjang ikan 14. Timbangan Untuk mengukur berat ikan 15. Pisau Untuk membersihkan ubi jalar 16. Dehidrator Untuk mengeringkan ubi jalar 17. Blender Untuk menghaluskan ubi jalar kering 18. Saringan Untuk mengayak tepung 19. Aerator Untuk melarutkan oksigen dalam air 20. Spuit Untuk mengambil sampel darah 21. Serbet Untuk menutup kepala ikan saat pengambilan darah 22. Nampan Sebagai wadah ikan saat pengambilan darah 23. Serok Untuk mengambil ikan dari akuarium 24. Objek glass Untuk pengamatan sel darah 25. Centrifuge Hematokrit Untuk mengendapkan darah 26. Hemometer sahli Untuk menentukan kadar hemoglobin 28. Batang Pengaduk Untuk menghomogenkan darah dan HCl 29. Cover glass Sebagai penutup objek glass saat pengamatan 30. Styrofoam Untuk menyimpan sampel darah 31. lilin/plastisin Sebagai penyumbat tabung mikrokapiler
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)
Daftar bahan yang digunakan pada penelitian ini ditampilkan pada Tabel 2.
Tabel 2. Bahan yang digunakan pada penelitian No Nama Bahan Fungsi 1. Ikan lele sangkuriang ukuran 13-14 cm Ikan uji 2. Ubi jalar kuning Sebagai prebiotik 3. Air Media pemeliharaan ikan 4. Pakan komersil merk comfeed Sebagai Pakan Ikan 5. Larutan antikoagulan Untuk mencegah penggumpalan daran 6. Larutan turks Digunakan pada uji total leukosit 7. Larutan metanol Sebagai pelarut 8. Larutan Hayem Digunakan pada uji total eritrosit 9. Larutan giemsa Sebagai pewarnaan pada diferensial leukosit 10. Aquades Untuk sterilisasi 11. Alkohol 70% Untuk sterilisasi

## Rancangan Penelitian
Penelitian  ini  merupakan  penelitian  eksperimental  laboratorium  dengan  rancangan  acak  lengkap  (RAL), menggunakan  empat  perlakuan  dan  tiga  ulangan.  Perlakuan  yang  digunakan  berdasarkan  hasil  terbaik  pada penelitian Herlina (2018), yaitu 3% ekstrak ubi jalar. Adapun perlakuan pada penelitian ini adalah sebagai berikut: P0 = 0% tepung ubi jalar kuning dalam pakan P1 = 1% tepung ubi jalar kuning dalam pakan P2 = 2% tepung ubi jalar kuning dalam pakan P3 = 3% tepung ubi jalar kuning dalam pakan

## Prosedur Penelitian

## 1) Persiapan Wadah dan Media Pemeliharaan
Akuarium dibersihkan menggunakan sabun. Akuarium dibilas hingga bersih lalu dikeringkan menggunakan kain  bersih.  Akuarium  didiamkan  hingga  kering  selama  24  jam.  Air  yang  digunakan  air  sumur  yang  diendapkan selama 5 hari di dalam ember sebelum dimasukkan ke dalam akuarium.

## 2) Persiapan Ikan Lele Sangkuriang
Air  dimasukkan  ke  dalam  akuarium  yang  telah  disiapkan.  Ikan  diaklimasi  dengan  cara  memasukkan  air akuarium kedalam wadah ikan selama 30  menit agar ikan dapat beradaptasi. Ikan diberi pakan komersial selama 5 hari

## 3) Persiapan Pakan
Ubi jalar dibersihkan dengan mengupas kulitnya. Diiris tipis agar mudah dikeringkan. Kukus ubi selama 30 menit.  Tunggu  hingga  ubi  jalar  kukus  suhu  ruang.  Ubi  jalar  yang  sudah  dikukus  dimasukkan  ke  dalam  dehidrator dengan suhu 50 o C dalam waktu 15 jam. Menghaluskan ubi jalar kering menggunakan blender hingga menjadi tepung lalu ayak menggunakan saringan. Menghaluskan pelet ikan dengan air. Mencampurkan pelet yang sudah dihaluskan dengan  tepung  ubi  jalar  kuning  sesuai  dosis  yang  ingin  diujikan.  Repelleting  pakan  komersial  dengan  tepung  ubi jalar kuning sesuai dosis.

## 4) Pelaksanaan
Ikan  dipelihara  selama  30  hari,  pakan  diberikan  secara at  satiation sesuai  dosis  perlakuan.  Pengambilan sampel  darah  sebanyak  5  ml/perlakuan  dengan  cara  mengambil  cairan  antikoagulan  pada  spuit  sebanyak  1  ml  lalu ambil darah ikan melalui pangkal ekor Darah yang telah terambil lalu dimasukkan ke dalam tabung eppendorf agar dapat diamati gambar darahnya (Bijanti, 2005). Kontrol terhadap kualitas air dengan melakukan penyiponan setiap hari  dan  mengganti  air  sekitar  25%  dengan  air  baru.  Mengamati  parameter  hematologi  ikan  lele  sangkuriang  yang terdiri  dari  hemoglobin,  hematokrit,  total  eritrosit,  total  leukosit  dan  diferensial  leukosit  serta  mengamati  NVC (Nutrition Value Coefficient) dan parameter kualitas air

## 5) Pengukuran Kualitas Air
Parameter kualitas air diukur secara insitu berupa suhu, pH, oksigen terlarut dan salinitas sedangkan amoniak diukur  secara eksitu yaitu  dengan  mengambil  sampel  pada  tambak  silvofishery  dan  non  silvofishery  kemudian dianalisis di Laboratorium Sistek Akuakultur FPIK UNMUL.
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)

## Analisis Data Penelitian
Pengumpulan  data  dilakukan  dengan  melakukan  pengambilan  sampel  udang  per  10  hari  dan  melakukan beberapa pengamatan. Adapun pengamatan tersebut adalah sebagai berikut:

## 1. Kadar Hemoglobin
Mengisi  tabung  sahli dengan  HCl  0,1  N  hingga  Skala  2.Mengambil  darah  dari  mikrotube  menggunakan  Pipet sahli  Sebanyak  20  mikropipet.  Menghomogenkan  dengan  Pengaduk  sahli.  Menunggu  hingga  warna  agak  gelap. Pengenceran menggunakan Aquades dengan warna standar (sama dengan termometer). Mengamati hasil (meniskus) dengan skala tabung dengan satuan g/dl.

## 2. Kadar Hematokrit
Mengisi  tabung  kapiler  dengan  sampel  darah  sebanyak  2/3  tabung.  Menutup  ujung  tabung  dengan  rapat menggunakan lilin dan dibungkus tisu agar tidak pecah saat disentrifus Disentrifugasi dengan kecepatan 1500 rpm selama  5  menit.  Bagian  yang  berwarna  merah  dari  isi  tabung  sebagai  hematokrit.  Menghitung  kadar  hematokrit dengan persamaan:

## 3. Total Eritosit
Mengambil  Sampel  darah  dari  Mikrotube  menggunakan  Pipet  thoma  hingga  di  Skala  0.5  (isap).  Mengambil larutan  hayem  dengan  metode  sama,  dan  dengan  pipet  yang  Sama,  hingga  skala.  Menghomogenkan  dengan  cara menggoyangkannya mengikuti angka 8. 4. Membuang 3-4 tetesan pada pipet. Meneteskan Pengenceran tadi (700x) ke objek glass (neubauer) di ruang Kamar besar (atas dan bawah). Menimpa dengan objek glass Segi. Preparat siap diamati
∑ eritrosit = n x 10 4 sel/mm 3

## 4. Total Leukosit
Mengambil  sampel  darah  dengan  pipet  thoma  hingga  Skala  0.5.  Mengambil  larutan  turk  hingga  Skala  11 menggunakan pipet thoma. Menghomogenkan dengan cara menggoyangkannya mengikuti angka 8. Membuang 3-4 tetes  dari  pipet  thoma.  Meneteskan  sampel  yang  sudah  diencerkan ke  kamar  hitung  (preparat  neubauer).  Menimpa dengan objek glass persegi. Mengamati preparat
∑ Leukosit = ∑ n x 50 sel/mm 3

## 5. Diferensial Leukosit
Mengambil 1 tetes sampel darah dari mikrotube. Meletakkan tetesan tersebut ke ujung objek glass. Mengulas I kali dengan cepat ke atas menggunakan objek glass lain. Mengeringkan Selama 15 menit. Menetaskan metanol, lalu menunggu kering hingga 15 menit. Merendam Preparat dengan larutan giemsa  Selama 15 menit. Membilas dengan air mengalir. Menunggu kering hingga 15 menit. Mengamati preparat

## 6. Nutrient Value Coefficient (NVC)
Alat-alat  yang  akan  digunakan  disiapkan  terlebih  dahulu.  Ikan  diambil  dari  akuarium,  ditimbang  dan  diukur panjang tubuhnya. Setelah itu ikan dimasukkan kembali ikan ke dalam akuarium.

## 7. Pengamatan Kualitas Air
Parameter  pengukuran  kualitas  air  menggunakan  water  checker  meliputi  suhu,  nilai  ammonia,  DO,  pH  dan salinitas yang dilakukan setiap 3 hari sekali pada tambak silvofishery dan non silvofishery. Parameter lainnya adalah nilai amonia nitrogen yang dilakukan 10 hari sekali yang dianalisis di Laboratorium Sistek Akuakultur.
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil  pengamatan  terhadap  beberapa  parameter  yang  terkait  dengan  hematologi,  respon  imuitas  seluler,  dan  NVC ikan lele sangkuriang selama  pengamatan.
Tabel  3. Hasil  pengamatan  terhadap  kadar  hemoglobin,  kadar  hematokrit,  total  eritrosit,  total  leukosit,  limfosit, monosit, neutrophil, dan NVC ikan uji.
Perlakuan Hari ke- Rata-rata Kadar Hemoglobin (g/%) Kadar Hematokrit (%) Total Eritrosit (x 10 6 sel/mm) Total Leukosit (x 10 3 sel/mm) Limfosit (%) Monos it (%) Neutro fil (%) NVC P1 0 5,85 ± 2,22 20,00 ± 12,19 1,47 ± 1,23 23,22 ± 8,96 84,71 10,01 5,23 0,70 ± 0,02 15 6,00 ± 1,74 37,84 ± 19,95 2,82 ± 1,01 66,60 ± 8,21 84,85 10,86 4,29 - 30 7,07 ± 0,50 67,50  ± 35,42 2,53  ± 0,21 71,36 ± 2,58 84,65 10,80 4,54 0,70 ± 0,01 P2 0 5,85 ± 2,22 20,00 ± 12,19 1,47 ± 1,23 23,22 ± 8,96 84,71 10,01 5,23 0,70 ± 0,01 15 6.60 ± 0,87 71,40 ± 44,02 3,15 ± 0,29 66,08 ± 9,54 84,72 10,91 4,37 - 30 6,07 ± 1,10 41,53 ± 2,29 2,01 ± 0,54 70,65 ± 2,27 84,50 10,71 4,79 0,70 ± 0,05 P3 0 5,85 ± 2,22 20,00 ± 12,19 1,47 ± 1,23 23,22 ± 8,96 84,71 10,01 5,23 0,71 ± 0,02 15 8,20 ± 0,87 52,19 ± 12,71 2,32 ± 0,37 70,76 ± 1,16 85,49 10,35 4,32 - 30 8,40 ± 0,53 79,01 ± 10,69 2,89 ± 0,38 75,23 ± 6,64 85,37 10,63 4,59 0,82 ± 0,05 P4 0 5,85 ± 2,22 20,00 ± 12,19 1,47 ± 1,23 23,22 ± 8,96 84,71 10,01 5,23 0,72 ± 0,03 15 7,93 ± 0,42 58,07 ± 15,69 2,96 ± 0,16 45,61 ± 5,93 84,05 9,98 6,48 - 30 8,00 ± 0,20 77,79 ± 25,20 2,35 ± 0,82 59,06 ± 2,45 84,61 9,68 5,30 0,75 ± 0,09
Hasil  pengamatan  terhadap  kadar  hemoglobon  (Tabel  3)  diketahui bahwa  kadar tertinggi pada  perlakuan 3 dengan  nilai  8,40  g/% kemudian  yang  terendah  pada  perlakuan  2  yaitu  6,07  g/%.  Pada  perlakuan  3  terjadi peningkatan  pada  kadar  hemoglobin  ikan  lele  sangkuriang  pada  hari  ke-0  yaitu  5,85  g/%  lalu  meningkat  pada hari ke-15  menjadi  8,20  g/%  dan  meningkat  lagi  pada  hari  ke-30  menjadi  8,40  g/%.  Hal  ini  diduga  karena  ikan  dapat memanfaatkan  pakan  dengan  baik  sehingga  tidak  ada  sisa  makanan  yang  mengotori  air  dan  mengakibatkan terganggunya  kualitas  air.  Pada  perlakuan  2  terjadi  penurunan  dari  hari  ke-15  dengan  nilai  6,60  g/%  dan  menurun pada  hari  ke-30  dengan  nilai  6,07  g/%.  Hal  ini  diduga  hasil  metabolisme  prebiotik  memberikan  kontribusi  dalam menentukan  jumlah  hemoglobin  dalam  eritrosit  mengingat  hemoglobin  adalah  bentuk  protein  yang  didalamnya terdapat ikatan Fe yang disebut dengan heme (Eliyani et al. 2013)
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)
Penurunan  kadar  hemoglobin  juga  diduga  karena  ikan  tidak  dapat  memanfaatkan  pakan  dengan  baik sehingga  pakan  menjadi  kotoran  yang  mengganggu  kualitas  air  pada  wadah  pemeliharaan  hal  ini  sejalan  dengan pendapat Hastuti dan Subandiyono (2011) kadar hemoglobin memiliki keterkaitan dengan kondisi kualitas air, ikan yang  hidup  pada  kualitas  air  yang  rendah  memiliki  kadar  hemoglobin  yang  rendah.  Rendahnya  kadar  hemoglobin menyebabkan  proses  pengangkutan  oksigen  dan  pengangkutan  nutrien  ke  seluruh  tubuh  terhambat  dan  proses metabolisme  menurun.  Laju  metabolisme  yang  menurun  mengakibatkan  energi  yang  dihasilkan  rendah,  akibatnya ikan menjadi lemah dan tidak memiliki nafsu makan (Bastiawan et al , 2001).
Berdasarkan tabel  dapat dilihat persentase tertinggi pada perlakuan 3 dan terendah pada perlakuan 2. Pada perlakuan 3 terjadi kenaikan persentase hematokrit pada hari ke-15 dan hari 30 yaitu dari 52,19% menjadi 79,01%. Sedangkan pada perlakuan 2 terjadi penurunan pada hari ke-30 yaitu pada hari ke-15 dengan nilai 71,40% menjadi 41,53%.  Hal  ini  diduga  karena  kandungan  tepung  ubi  jalar  sebagai  prebiotik  dalam  pakan  membantu  peningkatan kadar hematokrit dalam darah ikan, hal ini sejalan dengan hasil penelitian Azhar (2013) yang menunjukkan dengan penambahan  prebiotik  ubi  jalar  dalam  pakan  menghasilkan  persentase  hematokrit  tertinggi  dengan  pakan  tanpa penambahan prebiotik ubi jalar dalam pakan.
Nilai hematokrit adalah parameter yang berpengaruh terhadap pengukuran volume eritrosit, persentase nilai hematokrit  ikan  lele  ( Clarias sp . )  normal  berkisar  antara  30,8  -  45,5%  (Dopongtonung,  2008).  Nilai  hematokrit secara  langsung  berhubungan  dengan  jumlah  eritrosit  dan  konsentrasi  hemoglobin.  Maryani  (2003)  menyebutkan, nilai hematokrit yang lebih kecil dari 22% menunjukkan bahwa ikan mengalami anemia dan kemungkinan terinfeksi penyakit.  Pada  penelitian  ini  persentase  hematokrit  ikan  lele  melebihi  persentase  ikan  normal  tetapi  ikan  dapat dikatakan  sehat  karena  selama  penelitian  ikan  tetap  hidup  dengan  normal  hingga  tidak  ada  ikan  yang  mati  selama penelitian, lalu selama penelitian ikan tidak menunjukkan adanya gejala bahwa ikan itu tidak sehat.
Berdasarkan Tabel dapat dilihat bahwa total eritrosit pada ikan lele sangkuriang selama pemeliharaan masih dalam kisaran normal. Menurut Saputra (2011) secara umum jumlah eritrosit normal pada ikan adalah 2-300 x 10 4 sel/mm 3 akan tetapi pernyataan tersebut berbeda dengan pendapat beberapa peneliti lainnya. Misalnya Alamanda et al . (2007) dan Lukistyowati dan Windarti (2007) menyebutkan bahwa ikan yang normal jumlah eritrositnya berkisar 1-3 x 10 6 sel/mm 3 . Kemudian Bastiawan et al . (1995) menjelaskan juga bahwa jumlah eritrosit ikan lele dumbo yang normal yaitu 3,18 x 10 8 sel/mm 3 . Berdasarkan pendapat tersebut dapat dinyatakan bahwa ikan lele sangkuriang yang dipelihara pada penelitian ini secara umum jumlah eritrosit seluruh perlakuan adalah ikan sehat dan normal.
Total  eritrosit  tertinggi  ada  pada  perlakuan  3  dan  terendah  pada  perlakuan  2.  Pada  perlakuan  2  terjadi penurunan pada hari ke-30 dari total eritrosit hari ke-15 3,15 x 10 6 sel/mm menjadi 2,01 x 10 6 sel/mm pada hari ke- 30. Pada perlakuan 3 terjadi peningkatan dari hari ke-15 2,32 x 10 6 sel/mm menjadi 2,89 x 10 6 sel/mm pada hari ke- 30.  Hal  ini  diduga  karena  penambahan  prebiotik  dapat  meningkatkan  kemampuan  bakteri  probiotik  juga  mampu menstimulasi pembentukan eritrosit yang lebih cepat jika terjadi gangguan dari bakteri patogen. Bentuk dan ukuran kecil eritrosit  merupakan nilai adaptif bagi oksigen dan karbondioksida  yaitu sebagai pengangkut  yang dapat cepat menyebar  keseluruh    jaringan  dan  pada  umumnya  kisaran  normal  jumlah  eritrosit  ikan  yaitu  20.000-3.000.000 sel/mm 3 (Sjafei et al. (1989) dalam Marthen (2005)).
Berdasarkan hasil pengamatan pada Tabel dapat dilihat bahwa total leukosit tertinggi ada pada perlakuan 3 disusul  oleh  perlakuan  1  kemudian  perlakuan  2  dan  hasil  terendah  terdapat  pada  perlakuan  4.  Pada  penelitian  ini dapat  dikatakan  bahwa  total  leukosit  pada  ikan  uji  adalah  normal.  Hal  ini  sesuai  dengan  pernyataan  Lestari et  al . (2012) dan Noercholis et al . (2013)  yang  menyatakan bahwa jumlah total leukosit normal berkisar antara 20.000  - 150.000 sel/mm 3 .
Kenaikan  jumlah  leukosit  diduga  karena  adanya  penambahan  prebiotik  dalam  pakan  meningkatkan  respon imun  pada  ikan  uji.  Prebiotik  akan  berinteraksi  dengan  PRRs  dalam  bentuk  (MAMPs)  berupa  asam  teichoic, peptidoglikan, protein glikosilat atau polisakarida kapsular bakteri menyebabkan reaksi respons imun (Akhter et al., 2015). Menurut Arry (2007)  menyatakan peningkatan jumlah leukosit terjadi akibat adanya respon dari tubuh ikan terhadap kondisi lingkungan perairan yang buruk, faktor stres dan infeksi penyakit. Jumlah leukosit pada ikan yang terinfeksi  patogen  akan  meningkat  sebagai  upaya  pertahanan  tubuhnya  (Martins et  al .,  2008).  Penurunan  jumlah leukosit,  karena  leukosit  tersebut  diduga  aktif  dan  keluar  dari  pembuluh  darah  menuju  jaringan  yang  terinfeksi (Nuryati et al ., 2010). Menurut pendapat Rosidah et al . (2019), bahwa umur dan bobot ikan  mempengaruhi sistem darah  ikan  salah  satunya  dengan  bertambahnya  sel  darah  putih  yang  digunakan  sebagai  pertahanan  tubuh.  Kisaran total leukosit hasil penelitian masih berada pada kisaran normal.
Leukosit  memiliki  tanggung  jawab  dalam  respons  kekebalan,  apabila  ada  zat  asing  yang  masuk  ke  dalam tubuh  maka  leukosit  akan  membuat  antibodi.  Antibodi  akan  digunakan  oleh  sistem  kekebalan  tubuh  untuk memberikan rangsangan,  mengidentifikasi dan  menetralisasikan benda asing (antigen)  yang  masuk, seperti bakteri. Semakin  besar  rangsangan  antigen,  maka  semakin  banyak  antibodi  yang  akan  dihasilkan.  Bakteri  yang  masuk  ke dalam  tubuh  ikan  akan  diidentifikasi  oleh  leukosit  sebagai  antigen  (Hazzulli  et  al.,  2015).  Utami et  al .  (2013)
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)
menyatakan  bahwa  peningkatan  sel  leukosit  merupakan  refleksi  keberhasilan  sistem  imunitas  ikan  dalam mengembangkan respons imunitas seluler (non spesifik) sebagai pemicu untuk respons kekebalan.
Berdasarkan  Tabel  dapat  dilihat  bahwa  persentase  limfosit  tertinggi  ada  pada  perlakuan  3.  Peningkatan persentase  limfosit  ini  diduga  karena  ikan  mengalami  peningkatan  respon  imun  hal  ini  sejalan  dengan  menurut Ginting et al . (2021) peningkatan persentase limfosit merupakan salah satu tanda keberhasilan sistem imunitas dalam mengembangkan respons imun seluler (non spesifik). Pada penelitian ini peningkatan persentase limfosit terjadi pada perlakuan 3 sedangkan pada perlakuan lainnya tetap sama.
Pada  Tabel  8.  dapat  dilihat  bahwa  persentase  monosit  pada  perlakuan  4  terjadi  penurunan  hal  ini  diduga karena  berkaitan  dengan  fungsi  monosit  sebagai  makrofag,  dimana  monosit  tidak  dibutuhkan  untuk  memfagosit, dikarenakan  belum  adanya  infeksi  yang  masuk  ke  dalam  tubuh  yang  merangsang  produksi  monosit  (Rahma et  al ., 2015).  Jumlah  tersebut  masih  berada  dalam  kisaran  normal  monosit  pada  ikan  yaitu  berkisar  3-30%  (Iwana  dan Nakanishi, 1966). Pada penelitian ini persentase monosit ikan masih di dalam kisaran normal.
Persentase  neutrofil  pada  penelitian  ini  berkisar  4-5%.  Menurut  Preanger  et  al.  (2016),  persentase  normal dari  sel  neutrofil  pada  darah  ikan  berkisar  antara  5-8%.  Penurunan  neutrofil  terjadi  karena  mengalami  autolisis setelah  berhasil  menekan  infeksi  dari  mikroba  atau  benda  asing  yang  masuk  ke  dalam  ikan  (Rustikawati,  2012). Penurunan  persentase  sel  neutrofil  sebanding  dengan  meningkatnya  persentase  sel  limfosit  ikan  lele  dumbo  yang diberi pakan suplementasi tepung ubi jalar.
Pada  Tabel  3    menunjukan  hasil  pengamatan  nilai  Nutrient  Value  Coefficient  (NVC)  pada  ikan  lele sangkuriang  tertinggi  terdapat  pada  perlakuan  3  dengan  nilai  0,82,  lalu  diikuti  oleh  perlakuan  4  dengan  nilai  0,75 kemudian  perlakuan  1  dan  perlakuan  2  dengan  nilai  0,70.  Pada  hari  ke-30  terjadi  peningkatan  pada  perlakuan  3 dengan nilai awal 0,71 meningkat menjadi 0,82 dan perlakuan 4 dengan nilai awal 0,72 meningkat menjadi 0,75. Hal ini diduga karena kemampuan ikan dalam memanfaatkan pakan baik, sehingga pakan tidak ada yang tidak termakan atau  terbuang  dan  menyebabkan  perubahan  pada  kualitas  air  serta  meningkatnya  imunitas  ikan  menyebabkan kenaikan  pada  nilai  NVC.  Hal  ini  sejalan  dengan  pendapat  Saptiani  dan  Handoyo  (2006)  yang  menyatakan  bahwa nilai NVC ini digunakan sebagai petunjuk kondisi kesehatan dan pertumbuhan ikan yang normal dapat dipengaruhi oleh faktor internal maupun eksternal seperti lingkungan.
Penambahan  prebiotik  sebesar  2%  pada  perlakuan  3  diduga  telah meningkatkan  pertumbuhan  bakteri  yang menguntungkan  di  dalam  saluran  pencernaan  ikan  sehingga  proses  pencernaan  makanan  akan  lebih  mudah  karena dibantu oleh bakteri tersebut. Hasil yang sama juga diperoleh Putra et al. (2015) penambahan prebiotik 2% ubi jalar dalam  pakan  telah  meningkatkan  jumlah  konsumsi  pakan  ikan  nila  dibandingkan  dengan  kontrol.  Penambahan prebiotik  dalam  pakan  bertujuan  untuk  meningkatkan  populasi  probiotik  di  dalam  saluran  pencernaan  inangnya sehingga  mekanisme  aksi  dari  probiotik  dalam  menghasilkan  enzim  exogenous  untuk  pencernaan  semakin meningkat.  Enzim  exogenous  tersebut  akan  membantu  enzim  endogenous  di  inang  untuk  menghidrolisis  nutrien pakan  seperti  memecah  atau  menguraikan  rantai  panjang  karbohidrat,  protein  dan  lemak  penyusun  pakan. Pemecahan  molekul-molekul  kompleks  ini  menjadi  molekul  sederhana  akan  mempermudah  pencernaan  dan penyerapan dalam saluran pencernaan ikan (Putra ,2010).
Tabel 5. Kisaran nilai parameter kualitas air selama penelitian
Perlakuan Suhu ( o C) DO (mg/L) pH Total Amoniak Nitrogen (mg/L) P1 26-29 o C 4,0-8,0 6,7-7,9 0,456 P2 26-29 o C 4,0-7,9 6,8-7,7 0,332 P3 26-29 o C 4,6-7,7 6,8-7,9 0,348 P4 26-29 o C 4,2-7,8 6,6-7,8 0,412 Optimal (Acuan Pustaka) 24-30% (Djoko, 2008) 4 mg/L (Madinawati, 2011) 6,5-9 (Purwanti et al. , 2014) 0,6-2,0 mg/L (Pilay, 2004)
Pada  pemeliharaan  ikan  lele  selama  30  hari,  didapatkan  hasil  pengukuran  kualitas  air  yaitu  suhu  yang berkisar antara 26 - 29 ℃ . Adapun suhu yang optimal dalam budidaya ikan lele sangkuriang yaitu berkisar antara 24- 30 ℃ (Djoko, 2008). Suhu adalah salah satu parameter kualitas air yang memiliki peranan dalam budidaya ikan. Jika
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)
suhu  optimal  maka  ikan  akan  memiliki  metabolisme  yang  optimal  pula  yang  nantinya  akan  berdampak  baik  bagi pertumbuhan dan kelangsungan hidupnya.
Kisaran oksigen terlarut selama pemeliharaan yaitu 4,0-8,0 mg/L. Kisaran tersebut masih tergolong optimal untuk  pemeliharaan  ikan  lele  sangkuriang.  Menurut  Himawan  (2008)  kandungan  oksigen  yang  optimal  untuk pemeliharaan  ikan  lele  yaitu  4  mg/L.  DO  merupakan  jumlah  oksigen  terlarut  yang  terdapat  di  dalam  air.  Kadar oksigen  yang tidak dapat  memenuhi kebutuhan ikan dapat menyebabkan turunnya daya hidup ikan tersebut seperti berenang, pertumbuhan, maupun berkembang biak (Madinawati, 2011).
pH  air  selama  pemeliharaan  yaitu  berkisar  6,6-7,9.  Kisaran  tersebut  masih  tergolong  optimal  untuk pemeliharaan ikan lele sangkuriang. Adapun kisaran pH  yang optimal untuk pemeliharaan ikan lele menurut  Boyd (1982) dalam Purwanti et al. (2014) adalah kisaran 6,5-9. pH air dalam pemeliharaan ikan lele harus dalam keadaan yang  optimal  karena  kestabilan  pH  adalah  kunci  utama  sebagai  parameter  budidaya  lele  dikatakan  baik.  pH merupakan derajat keasaman untuk menentukan tingkat keasamaan atau kebasaan suatu larutan.
Amoniak (NH3) selama pemeliharaan yaitu berkisar 0,332 – 0,456. Kisaran ini masih tergolong aman untuk budidaya ikan lele. Pilay (2004) menyatakan bahwa kisaran optimal ammonia  yang tergolong toksik berkisar 0,6  – 2,0  mg/L.  Hal  ini  membuktikan  bahwa  kisaran  ammonia  selama  pemeliharaan  tergolong  optimal.  Amonia merupakan  senyawa  yang  dihasilkan  dari  katabolisme  protein  yang  diekskresikan  oleh  organisme  yang  merupakan salah satu hasil penguraian zat organik oleh bakteri.
Pada penelitian ini dapat dinyatakan bahwa dengan penggunaan ubi jalar dalam pakan dengan dosis berbeda tidak    menyebabkan  penurunan  kualitas  air.  Hal  ini  diduga  karena  pakan  yang  diberikan  selalu  habis  termakan sehingga tidak ada sisa pakan yang terbuang dan mengendap. Tidak adanya sisa pakan yang terbuang membuat air tetap bersih dan kualitas air tidak mengalami penurunan.

## KESIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian suplementasi tepung ubi jalar sebagai prebiotik dalam pakan terhadap kesehatan ikan lele sangkuriang dapat disimpulkan bahwa:
1. Penambahan  tepung  ubi  jalar  kuning  dengan  dosis  yang  berbeda  dalam  pakan  dapat  meningkatkan  parameter hematologis dan imunitas seluler ikan lele sangkuriang hal ini dibuktikan dengan hasil uji pada perlakuan dengan dosis 2% tepung ubi jalar per kg pakan lebih baik dibandingkan dengan perlakuan lain.
2. Penambahan tepung ubi jalar kuning dengan dosis yang berbeda dalam pakan dapat meningkatkan terhadap NVC ( Nutrition Value Coefficient ) ikan lele sangkuriang. Nilai NVC tertinggi dihasilkan oleh perlakuan 2% tepung ubi jalar per kg pakan yang menghasiljan NVC sebesar  0,82 ± 0,05.

## DAFTAR PUSTAKA
Ahmad, T., Ernawati dan M. Yakob, 1998. Budidaya Bandeng Secara Intensif.Penebar Swadaya. Bogor. Hal. 1-2 Alfonso,  G.  2001.  Respiratory  Characteristic  Of  Hoplosternum  Littorale (Siluriformes:  Channichthyidae). Acta Amazonia 31, 249-262.
Amri, K., Khairuman. 2008. Budidaya Ikan Lele Secara Intensif . Jakarta: Agromedia Pustaka Bijanti,  R.  2005.  Hematologi  Ikan.  Teknik  Pengambilan  Darah  dan  Pemeriksaan  Hematologi  Ikan.  Bagian  Ilmu
Kerdokteran Dasar Veteriner FKH Unair. 17 hlm.
Bradbury,  J.  H.  and  W.  D.  Holloway.  1988.  Chemistry  of  Tropical  Root  Crops:  Significance  for  Nutrition  and Agriculture in Pacific Asian. Canberra.
Cahyono, B. 2009. Budidaya Lele Dan Betutu (Ikan Langka Bernilai Tinggi).Pustaka Mina. Jakarta. 63 Hlm. Charoensiri R, Kongkachuichai R, Suknicom S, Sungpuag P. 2009. Βetacarotene, Lycopene, And Alpha-Tocopherol Contents Of Selected Thai Fruits. Food Chem 113: 202–207. DOI: 10.1016/J.Foodchem.2008.07.074. Cholik, F. Et Al. 2005. Akuakultur. Masyarakat Perikanan Nusantara. Taman Akuarium Air Tawar. Jakarta Cummings, J. H. Dan Macfarlane, G. T. 2002. British Journal Of Nutrition. 87 (Suppl. 2) S145-S1151. Dosim. Hardi, E.H. Agustina. 2013. Efek Penginjeksian Produk Intraseluler (ICP) Dan Ekstraseluler (RCP) Bakteri Pseudomonas  Sp.  Terhadap  Gambaran  Darah  Ikan  Nila (Oreochromis  Niloticus). Jurnal  Ilmu  Perikanan Tropis Vol. 19. No. 1.
E. Ringo, R.E. Olsen, T.O. Gifstad, R.A. Dalmo, H. Amlund, G.I. Hemre, A.M. Bakke, Prebiotics In Aquaculture: A Review, Aquacult. Nutr. 2010. Hal. 117–136, Https://Doi.Org/10.1111/J.1365-2095.2009.00731.X. Effendi  H.  2003.  Telaah  Kualitas  Air  Bagi  Pengelolaan  Sumberdaya  Dan  Lingkungan  Perairan . Kanisius. Yogyakarta. Hal 257.
Eliyani, Y., Widanarni, W., & Wahjuningrum, D. (2013). Pengaruh Penggunaan Probiotik Lactobacillus brevis dan Prebiotik Oligosakarida (Fructooligosakarida-Galaktoologosakarida) Terhadap Gambaran Darah Patin Siam ( Pangasionodon Hypophtalmus ) yang Diinfeksi Aeromonas Hydrophila. Jurnal Penyuluhan Perikanan dan Kelautan , 7 (1), 40-51.
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)
Fachrul, Melati Ferianita. 2012. Metode Sampling Bioekologi. Jakarta: PT Bumi Aksara. Fauzi, Faisal Nur. 2013. Pasti Panen Lele. Sahabat. Klaten Gatlin,  Burr  G,  Li  Peng,  Buentello  A.  2008.  Prebiotic  Applications  In  Aquaculture  For  Health  Management.
International Aquafeed. [Edisi: November- Desember 2008]
Ghufran, M Dan Kordi, K. 2009. Budidaya Perairan. PT. Citra Aditya Bakti. Bandung. Ghufran, M. 2010. Budi Daya Ikan Patin Di Kolam Terpal. Lily Publisher. Yogyakarta
Gibson  G.R.  Dan  Roberfroid,  M.B.  Dietary  Modulation  Of  The  Human  Colonic  Microbiota:  Introducing  The Concept Of Prebiotics . J. Nut. 1995. 125, 1402-1412
Hastuti  E.  Supriyono,  I.  Mokoginta  &  Subandiyono.  2003.  Respon  Glukosa  Darah  Ikan  Gurami  Terhadap  Stres Perubahan Suhu Lingkungan. Jurnal Akuakultur Indonesia, 2(2): 73- 77. Yogyakarta Haryati, T., Supriyati dan I.W.R. Susana. 2010. Senyawa Oligosakarida dari Bungkil Kedelai dan Ubi  Jalar sebagai Probiotik untuk Ternak. Pros. Seminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner. Bogor, 3  – 4 Agustus 2010. Puslitbang Peternakan. Bogor. Hal 511 – 518.
Haryati, T. dan Supriyati. 2010. Pemanfaatan senyawa oligosakarida dari bungkil kedelai dan ubi jalar pada ransum ayam pedaging. JITV 15(4): 252 – 260
Heyne, K., 1987. Tumbuhan Berguna Indonesia Volume II. Yayasan Sarana Wana Jaya : Diedarkan oleh Koperasi Karyawan, Badan Litbang Kehutanan. Jakarta.
Irianto, A. 2005. Patologi Ikan Teleostei. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press.
Iqbal,  M.  2011.  Kelangsungan  Hidup  Ikan  Lele  (Clarias  gariepinus)  Pada  Budidaya  Intensif  Sistem  Heterotrofik.
[Skripsi].  Jakarta:  Program  Studi  Biologi  Fakultas  Sain  dan  Teknologi  Universitas  Islam  Negeri  Syarif Hidayatullah Jakarta.
Kementerian  Pertanian  Republik  Indonesia.  2019. Buletin  Konsumsi  Pangan  2019 .  Buletin  Konsumsi  Pangan,  10. http://epublikasi.setjen.pertanian.go.id/epublikasi/buletin/konsumsi  /2019/Buletin  Konsumsi  Vol  10  No  1 2019.htm
Kordi, K. M. 2004. Penanggulangan Hama dan Penyakit Ikan . Jakarta: Rineka Cipta dan Bina Aksara. Kwon,  Jeremiah.  2012. Sel  Darah  Merah  (Eritrosit),  Sel  Darah  Putih  (Leukosit)  Dan  Keping  Darah  (Trombosit) . Jurnal Mina Laut Indonesia. Vol. 02 No. 06 (26-34). Lagler,  K.F.,  J.E.  Bardach,  R.R.  Miller  And  D.R.M  Passino.  1977 .  Ichthyology .  John  Wiley  And  Sons,  Inc,  New York-London, 506
Larrson,  A.,  Haux,  &  Sjobeck,  M.  1985.  Fish  Physiology  And  Metal  Pollution.  Result  And  Experience  From Laboratory And Field Study. Ecotoxicol Environ. Saf. 9, 250-281.
Lesmanawati,  W.,  Widanarni.,  Sukenda.,  Purbiantoro,  W.  Potensi  ekstrak  oligosakarida  ubi  jalar  sebagai  prebiotik bakteri probiotik akuakultur. J Sains Terapan 2013; 3(1): 16-20 https://doi.org/10.29244/jstsv.3.1.16-20 Lukito, A. M. 2002. Lele Ikan Berkumis Paling Populer. Agromedia.Jakarta Macmillan Publisher. London. Manning T. S. Dan Gibson G.R. Prebiotics. Best Practice And Search Clinical Gastroenterology. 2004. 18:287-298. Marlis  A.  2008.  Isolasi  oligosakarida  ubi  jalar  (Ipomoea  batatas  L)  dan  pengaruh  pengolahan  terhadap  potensi prebiotikny a [tesis]. Bogor: Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor.
Merrifield DL, Dimitroglou A, Foey A, Davies SJ, Baker RTM, Bogwald J, Castex M And Ringo E. 2010. Review: The Current Status And Future Focus Of Probiotic And Prebiotic Applications For Salmonids . Aquaculture 302: 1–18.
Mirvanda, Nindy (2017) Kajian Proses Optimalisasi Suhu Dan Lama Pengeringan Terhadap Kualitas Dan Kuantitas Pati  Ubi  Jalar (Study  Of  Process  Optimization  of  Temperature  And  Long  Drying  Of  The  Quality  And Quantity Of Starch From Sweet Potato). Undergraduate thesis, undip.
Mulyani  S.  2006.  Gambaran  Darah  Ikan  Gurame  Osphronemus  gouramy  Yang  Terinfeksi  Cendawan  Achlya  sp.
Pada  Kepadatan  320  Dan  720  Spora  Per  mL.  Skripsi.  Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan,  Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Munkitrik, K. R., & Leatherland, J. F. 1983. Hematocrit Values In Feral Goldfishcarasius Auratus L., As Indicator Of The Health Of The Population . J. Fish Biol 23, 153-161 Najiyati, Sri. 1997. Memelihara Ikan Lele Dumbo di Kolam Taman. Penebar Swadaya. Jakarta. Nurisa, Ima. 1994. Peran Ikan Nila Sebagai Pengendali Nyamuk Vektor Malaria. Media Litbangkes, 4(2):15-17. Patel,  S.  Dan  A.  Goyal.  2012.  The  Current  Trends  And  Future  Perspective  Of  Prebiotics  Research:  A  Review.  3 Biotech, 2 : 115-125
Putra, A. N. 2015. Gambaran  Darah Ikan Patin (Pangasius Sp.) Dengan Penambahan Prebiotik Pada Pakan. Jurnal Ilmu Pertanian Dan Perikanan. 4 (1): 63-69 Hlm.
Putri RR, Basuki F, Hastuti, S. 2013. Profil Darah Dan Kelulushidupan Ikan Nila Pandu F5 (Oreochromis Niloticus) Yang  Diinfeksi  Bakteri  Streptococcus  Agalactiae  Dengan  Kepadatan  Berbeda . Journal  Of  Aquaculture
Liana, Agustina, dan Heru Kusidanto. Suplementasi Tepung Ubi Jalar Kuning (Ipomoea batatas L) Sebagai Prebiotik Dalam Pakan Terhadap Kesehatan Ikan Lele Sangkuriang (Clarias gariepinus)
Management And Technology 2(2): 47-56.
Pratiwi,  Y.  2010.  Penentuan  Tingkat  Pencemaran  Limbah  Industri  Tekstil  Berdasarkan  Nutrition  Value  Coeficient Bioindikator
Purwanti, Et al., 2006. Pemodelan Salinitas Air Tanah Di Surabaya Timur. Prosiding Seminar Nasional Manajemen Teknologi III. Purwanto,  A.  2006.  Gambaran  Darah  Ikan  Mas  (Cyprinus  Carpio)  Yang  Terinfeksi  Koi  Herpes  Virus. [Skripsi]. Program  Studi  Teknologi  Dan  Manajemen  Akuakultur.  Fakultas  Perikanan  Dan  Ilmu  Kelautan.  Institut Pertanian Bogor. Bogor. 35 Hlm.
Rahardjo, M. F., Sjafei, D. S., Affandi, R., & Sulistiono (2011). Ikhtiologi . Jakarta: Lubuk Agung Ringo  E,  Olsen  RE,  Gifstad  TTO,  Dalmo  RA,  Amlund  H,  Hemre  GL,  Dan  Bakke  AM.  2010. Prebiotics  In Aquaculture: A Review . Aquaculture Nutrition 16:117-136.
Rustikawati  I.  2012.  Efektivitas  Ekstrak  Sargassum  Sp.  Terhadap  Diferensiasi  Leukosit  Ikan  Nila (Oreochromis Niloticus) Yang Diinfeksi Streptococcus Iniae. Jurnal Akuatika 3(2) Saptiani,  G.,  E.B.  Handoyo,  2006.  Gambaran  darah  Ikan  Mas  ( Cyprinus  Carpio )  Yang  Dibudidayakan  Dalam Karamba Di Sungai Segah Kabupaten Berau. Frontir 1:18-22 .
Schrezenmeir, J & Vrese, M. 2001. Probiotics, Prebiotics And Synbioticapproaching A Definition. American Journal Of Clinical Nutrition, 73: 2; 361-364.
Siniwoko, Endro. 2013. Budidaya Dan Bisnis Ikan Nila. Surabaya : Dafa Publishing Sucipto, A Dan Prihartono (2005). Pembesaran Nila Merah Bangkok. Penebar Swadaya. Jakarta.
Sutikno,  E.  2011.  Pembuatan  pakan  buatan  ikan  bandeng.  Direktorat  Jenderal  Perikanan  Budidaya  Balai  Besar Pengembangan Budidaya Air Payau. Jepara.
Suyanto, Rakhmatun. 2001. Budidaya Ikan Lele. Penebar Swadaya. Jakarta.
Syarief; R. dan Irawati, 1988. Pengetahuan Bahan untuk Industri Pertanian. Jakarta : Mediyatama Sarana Perkasa. Tancung,  A.B.,  Dan  Kordi,  M.G.H.K.  2010.  Pengelolaan  Kualitas  Air  Jurnal  Ilmiah  Rekayasa  Pertanian  Dan Biosistem, Dalam Budidaya Perairan. Penerbit Rineka Cipta. Jakarta.
Wijaya,  G.  S.,  &  Yazid,  M.  2009.  Struktur  Mikroanatomis  REN  Dan  Koefisien  Nilai  Nutrisi  (NVC)  Bioindikator Ikan Tawes (Puntius Javanicus, Blkr) Yang Hidup Pada Kolam Terpadu PTAPBBATAN. Prosiding Seminar Keselamatan Nuklir (Pp.1-13).
Woolfe, J.A. 1992. Sweet Potato: An Untapped Food Resource. Cambridge University Press. Australia.