Vol. 05 No. 2 Agustus 2014, Hal 77-83 ISSN: 2086-82

## Identifikasi Kandungan Kimia Bermanfaat pada Daun Jabon
Merah dan Putih ( Anthocephalus spp.)
Identifcation of Useful Chemical Content of Red and White Jabon Leaf (Anthocephalus spp.)
Martini Wali 1) , Noor Farikhah Haneda 2) , Nina Maryana 3)
1) Mahasiswa pascasarjana Program Studi Silvikutur Tropika, Fakultas Kehutanan IPB.
2) Staf pengajar Depertemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan IPB.
3) Staf pengajar Depertemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian IPB.

## ABSTRACT
Jabon (Anthocephalus spp.) is a tree that has multiple functions. In addition to timber, jabon also useful as medicinal plants and fodder. This study aims to determine the primary compound content and the content of secondary metabolic compounds in the leaves of red and white jabon. Test methods used were the proximate test for identification of primary compounds and phytochemicals testing for the identification of secondary metabolic compounds from the jabon leaves. In general, the proximate test results show that white jabon leaves contain moisture, crude protein, crude fiber, ADF (Acid Detergent Fiber) and lignin in a greater percentage than that of red jabon 96.35%, 16.44%, 14.49%, 38.72%, 24.21%, respectively. Red jabon leaves contain more crude fat and cellulose, i. e. 3.15% and 10.13 %, respectively, while other component such as ash content, NFE (Nitrogen Free Extract), Ca, P, N and silica with values 6.72%, 56.29%, 1.47 %, 0.25%, 2.63%, 0.04% on white jabon, and 6.95%, 56.16%, 1.84%, 0.32%, 2.36%, 0.07% on red jabon. The content of salt (NaCl) in the same percentage is 0.03%. The test results showed that the phytochemical compounds identified are quinone compounds and steroids with higher concentration on leaves of red jabon than white jabon leaves. Based on the color type of quinone compounds were identified class of anthraquinone compounds. The results showed that the leaves of  red  jabon  can  be  used  as  medicinal  plants  because  they  contain  substantial  amount  of  secondary  metabolic compounds.  White  jabon  can  be  used  as  an  alternative  feed  source  for  livestock  because  it  contains  more  nutrition compounds.
Keywords : Anthocephalus spp., primary compounds, secondary metabolic compounds, phytochemicals, proximate.

## PENDAHULUAN
Jabon  termasuk  dalam  famili  Rubiaceae  merupakan jenis  pohon  penghasil  kayu  yang  dewasa  ini  gencar dikembangkan  masyarakat  Indonesia  karena  memiliki pertumbuhan  yang  cepat.  Jabon  yang  dikenal  saat  ini dibedakan atas dua jenis yaitu jabon merah ( Anthocephalus macrophyllus [Roxb.] Havil.) dan jabon putih ( Anthocephalus cadamba Roxb.). Selain itu jabon merupakan  jenis  pohon  yang  memiliki  prospek  tinggi untuk hutan tanaman industri maupun hutan rakyat yang ada  di  Indonesia,  karena  pertumbuhan  yang  sangat cepat,  kemampuan  beradaptasinya  pada  berbagai kondisi tempat tumbuh, serta perlakuan silvikultur yang relatif  mudah.  Jabon  juga  diharapkan  menjadi  semakin penting  bagi  industri  perkayuan  di  masa  mendatang, terutama  ketika  bahan  baku  kayu  pertukangan  dari hutan alam semakin berkurang (Krisnawati et al . 2011). Dalam  prakteknya  jabon  telah  dikenal  dengan  baik teknik  budidaya  dan  pemanfaatannya  oleh  masyarakat. Pemilihan  teknik  silvikultur  yang  tepat  sangat  penting dalam  pengembangan  pengelolaaan  sumberdaya  hutan dengan  tujuan  yang  diharapkan.  Pertumbuhan  jabon  di lahan kritis cukup baik, bahkan dapat dijadikan sebagai buffer  zone untuk  kepentingan  konservasi  atau  daerah penyangga  karena  memiliki  perakaran  yang  dalam.
Jabon  juga  digunakan  untuk  program  reboisasi  dan penghijauan,  serta  dapat  memperbaiki  sifat-sifat  fisika dan  kimia  tanah  di  bawah  tegakan  karena  serasah cabang,  ranting  dan  daun-daun  yang  lebar  dan  besar mampu meningkatkan kandungan karbon organik tanah, kapasitas  tukar  kation  dan  nutrisi  tanaman  (Orwa et  al. 2009).
Pemanfaatan  jabon  sebagai  kayu  pertukangan  tidak diragukan  lagi.  Kayu  jabon  dapat  digunakan  untuk bahan  baku  kayu  lapis,  konstruksi  ringan,  lantai, pulp dan  kertas,  langit-langit,  kotak,  peti,  mainan,  ukiran, korek  api,  sumpit  dan  pensil.  Kayu  jabon  juga  dapat dipakai  untuk  bahan  pembuatan  sampan  dan  perkakas rumah  sederhana  jika  dikeringkan  dengan  benar.  Kayu jabon  termasuk  dalam  kayu  kelas  kuat  II-III  dan tergolong  kayu  kelas  awet  IV  serta  termasuk  kelas sedang  dalam  hal  menyerap  bahan  pengawet.  Kayu  ini dapat dimanfaatkan untuk bahan baku plywood, furnitur, kayu lapis, aksesoris rumah, dan lain lain (Halawane et al . 2011).
Pemanfaatan non kayu jabon yaitu ekstrak dari daun jabon  dapat  berfungsi  sebagai  obat  kumur.  Daun segarnya  dapat  digunakan  sebagai  pakan  ternak  atau kadang-kadang  digunakan  sebagai  piring  dan  serbet. Kulit  kayu  yang  kering  digunakan  sebagai  bahan  tonik dan  obat  untuk  menurunkan  demam.  Pewarna  kuning
dari  kulit  akar  dapat  berfungsi  sebagai  tanin (Soerianegara  dan  Lemmens  1993 dalam Krisnawati et al .  2011).  Pemanfaatan  non  kayu  dari  jabon  ini diharapkan  dapat  digunakan  sebagai  alternatif  untuk menggantikan  tanaman  sumber  hijauan  yang  penting untuk  ternak  yang  lebih  bermanfaat  daripada  lamtoro dan gamal.
Studi  tentang  kegunaan  non  kayu  dari  jabon  ini belum  banyak  diteliti  di  Indonesia,  seperti  kandungan kimia  dari  daun  jabon  merah  dan  putih.  Padahal informasi  ini  sangat  bermanfaat  dalam  pemanfaatan daun  jabon  sebagai  tanaman  yang  berkhasiat  sebagai sumber  tanaman  obat  dan  sumber  nutrisi  untuk  ternak. Oleh karena itu penelitian ini dilakukan untuk mengkaji kandungan  senyawa  primer  dan  senyawa  metabolik sekunder yang terkandung dalam daun jabon merah dan putih.  Kandungan  senyawa  primer  berperan  sebagai nutrisi  dalam  penentuan  pertimbangan  daun  jabon sebagai  pakan  ternak  dan  informasi  senyawa  metabolik sekunder  diharapkan  dapat  berperan  sebagai  sumber tanaman obat yang bermanfaat bagi kesehatan.

## BAHAN DAN METODE

## Tempat dan Waktu
Penelitian  dilakukan  pada  dua  laboratorium  yang berbeda.  Penelitian  pengujian  proksimat  dilakukan  di Laboratorium  Ilmu  dan  Teknologi  Pakan,  Fakultas Peternakan,  IPB,  sedangkan  pengujian  fitokimia dilaksanakan  di  Laboratorium  Kimia  Organik,  Fakultas Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam,  IPB. Penelitian  dilaksanakan  mulai  bulan  Januari  –  April 2014.

## Bahan dan Alat
Bahan dan alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah: daun jabon merah dan putih masing-masing 100 gram,  timbangan  digital,  mikroskop,  gunting,  pinset, alat  tulis,  kalkulator,  kamera  digital,  kantong  plastik, kertas  label  serta  alat-alat  pengujian  fitokimia  dan proksimat.

## Metode Penelitian

##  Persiapan Tanaman Uji
Bahan  tanaman  yang  digunakan  adalah  daun  jabon merah  dan  daun  jabon  putih  dari  pohon  berumur  tujuh bulan yang berada pada posisi ke tiga dari tunas (pucuk) dan  masih  berwarna  hijau.  Daun    diambil  secara  acak dan  berasal  dari  Hutan  Rakyat  Desa  Cibanteng,  dan Desa Cilubang, Kecamatan Dramaga, Kabupaten Bogor. Pemilihan  posisi  daun  yang  digunakan  sebagai  sampel adalah dengan pertimbangan sampel tersebut merupakan  sampel  yang  optimal  yang  berada  pada pertengahan  umur  (daun  tua  dan  muda).  Daun  jabon yang  diambil  dari  lapangan  dibersihkan  dengan  air kemudian  dikeringudarakan  tanpa  terkena  cahaya matahari  langsung  selama  dua  hari  atau  dioven  dengan suhu  20°C  selama  dua  hari.  Setelah  kering,  daun dihaluskan dan siap untuk diuji.

##  Analisis Proksimat Lengkap (Senyawa Primer)
Uji  proksimat  terdiri  atas  uji  kadar  air,  kadar  abu, kadar  protein  kasar,  kadar  serat  kasar  dan  kandungan lemak  total.  Uji  mineral  meliputi  kandungan  Ca,  P  dan NaCl. Analisis serat meliputi ADF, selulosa , lignin dan silika (AOAC 2005 dan SNI 01-2891-1992).
Pengujian  Kadar  Air .  Siapkan  cawan  yang sebelumnya telah dipanaskan ± 1 jam pada oven 105 o C dan  didinginkan  dalam  eksikator/desikator,  kemudian ditimbang berat cawan (X). Sampel  ± 5 gram ditimbang ( Y ),  kemudian  diletakkan  ke  dalam  cawan.  Ke  dalam oven  105 o C  sampel  dimasukkan  selama  ±  4–6  jam (tercapai  bobot  tetap).  Sampel  diangkat,  kemudian didinginkan  dalam  eksikator  selama  10  menit.  Berat sampel ditimbang dan dicatat. Tahapan tersebut diulangi sampai diketahui berat stabilnya (Z). Perhitungan kadar air dilakukan dengan rumus:
Kadar Air pada 105 o C = x 100%
Pengujian  Kadar  Abu .  Cawan  yang  sebelumnya telah dipanaskan pada tanur 400-600 o C dan didinginkan dalam eksikator, kemudian  ditimbang  (X). Sampel ± 5 gram  ditimbang  dan  dimasukkan  ke  dalam  cawan kemudian  ditimbang  lagi  (Y),  selanjutnya  sampel dibakar  di  atas hot  plate sampai  tidak  berasap.  Setelah proses pembakaran selesai sampel dimasukkan ke dalam tanur  selama  1  jam  sampai  suhu  800  °C.  Sampel kemudian  diangkat  dan  dinginkan  di  dalam  eksikator selama  30  menit.  Berat  sampel  ditimbang  dan  dicatat (Z). Perhitungan kadar abu dilakukan dengan rumus:
Kadar Abu  = x 100%
Pengujian Serat Kasar . Sampel ditimbang sebanyak  ±  1  gr  (x),  kemudian  dimasukkan  ke  dalam gelas  piala.  Sampel  dimasukkan  ke  alat Heater  extract dan ditambahkan dengan 50 ml H 2 SO 4 0.3 N, kemudian diekstrak    selama  30  menit.  Setelah  diekstrak ditambahkan  dengan  25  ml  NaOH  1.5  N  dan  diekstrak kembali  selama  30  menit.  Selagi  sampel  diekstrak Whatman 41  yang  telah  dipanaskan  dalam  oven  105 o C selama  1  jam  dan  ditimbang  disiapkan  (a).  Selanjutnya cairan  disaring  menggunakan Whatman 41  dan dimasukkan  ke  dalam  corong buchner ,  penyaringan tersebut  dilakukan  dengan  labu  pengisap  yang dihubungkan  dengan  pancar  air.  Sampel  yang  selesai disaring, kemudian  dicuci  berturut-turut  dengan menggunakan  50  ml  air  panas,  50  ml  H 2 SO 4 0.3  N,  50 ml  air  panas  dan  25  ml  aseton. Whatman 41  beserta isinya dimasukkan ke dalam cawan porselen, selanjutnya  dikeringkan  dengan  oven  105 o C  selama  1 jam.  Sampel  diangkat  dan  dinginkan  dalam  eksikator kemudian  timbang  beratnya  (Y).  Setelah  ditimbang sampel  ditempatkan  pada  cawan  dan  dimasukkan  ke dalam  tanur  selama  1  jam  sampai  suhu  mencapai  800 °C, sampel diangkat dan dinginkan kemudian ditimbang beratnya  (Z).  Perhitungan  kandungan  serat  kasar dilakukan dengan rumus:
Vol. 05 April 2014
% Serat Kasar  = x 100%
Pengujian  Protein  Kasar .  Pengujian  protein  kasar dilakukan  dengan  beberapa  tahapan.  Tahapan  pertama yaitu  tahap  destruksi  dimana  sampel  ditimbang sebanyak  ±  0.3  gram,  kemudian  ditambakan  ±  1.5  gr katalis Selenium Mixture . Selanjutnya sampel dimasukkan kedalam labu Kjeldahl dan ditambahkan 20 ml  H 2 SO 4 pekat,  dan  didestruksi  sampai  warna  larutan menjadi  hijau-kekuningan-jernih.  Tahap  kedua  yaitu tahapan  destilasi,  setelah  proses  destruksi  sampel didinginkan  selama  ±  15  menit.  Ke  dalam  sampel ditambahkan  300  ml  aquadest,  kemudian  dinginkan kembali,  setelah  proses  pendinginan  ditambahakan dengan  100  ml  NaOH  40  %  (teknis)  dan  dilakukan destilasi.  Proses  destilasi  ini  berlangsung  selama  ±  30 menit  sampai  terjadinya  letupan.  Tahapan  ketiga  yaitu proses  titrasi.  Hasil  destilasi  dicampur  dengan  10  ml H 2 SO 4 0.1  N  yang  sudah  ditambah  3  tetes  indikator campuran Methylen  Blue dan Methylen  Red dengan NaOH 0.1 N sampai terjadi perubahan warna dari ungu menjadi  biru-kehijauan.  Pada  proses  titrasi  ini  juga dilakukan  penetapan  blanko  (sebagai  pembanding): pipet 10 ml H 2 SO 4 0.1 N dan ditambah 2 tetes indikator PP, kemudian dititrasi dengan NaOH 0.1 N. Perhitungan protein kasar dilakukan dengan rumus:
% Protein = – x 100%
Pengujian  Kadar  Lemak .  Labu  penyari  (labu lemak)  disiapkan  sebelumnya,  dengan  batu  didih  di dalamnya yang sebelumnya telah dipanaskan pada suhu 105-110 o C  dan  didinginkan  di  dalam  eksikator.  Berat labu  penyari  ditimbang  (a).  Sampel  daun  yang  telah dihaluskan ditimbang ± 1 gram (x), dan  dimasukkan ke dalam  selongsong  penyaring,  kemudian  ditutup  dengan menggunakan  kapas  tidak  berlemak.  Selongsong penyaring  ini  dimasukkan  ke  dalam  alat soxlet , selanjutnya  disaring  menggunakan petroleum  benzin . Selanjutnya  ekstraktor  dihubungkan  dengan  kondensor, proses ini dilakukan menggunakan alat FATEX-S . Labu penyari  diangkat  dari  alat FATEX-S ,  kemudian dikeringkan  dalam  oven  105-110 o C  sampai  bobotnya tetap (± 4-6 jam). Sampel diangkat dari oven, kemudian didinginkan  dalam  eksikator  selama  30  menit, selanjutnya  ditimbang  bobot  akhirnya  (b).  Perhitungan lemak kasar dilakukan dengan rumus:
% Lemak  = x 100%
Pengujian  Van  Soest .  Sistem  analisis Van  Soest merupakan kelanjutan dari uji serat, yaitu menggolongkan zat pakan  menjadi isi sel ( cell content ) dan  dinding  sel  ( cell  wall ).  Analisis  serat  yang dilakukan  dalam  penelitian  ini  meliputi  analisis  ADF, sellulosa  dan  lignin.  Analisis  ADF  mewakili sellulosa dan lignin dinding sel tanaman.
Analisis  ADF.  Prinsip  dasar  dari  analisa  ini mengukur bagian dinding sel tanaman yang tidak dapat larut  dalam  larutan  detergen  asam  dengan  komposit
utama  CTAB  ( Cetyl  Trimethyl  Ammonium  Bromide ) pada  pemanasan  satu  jam.  Larutan  detergent  asam  atau Acid  Detergent  Solution (ADS)  dibuat  dengan melarutkan CTAB 20 gram dalam 27,5 asam sulfat 1 N dan ditambahkan aquadest hingga volumenya menjadi 1 liter.  Contoh  atau  sampel  ditimbang  sebanyak  1  gram (A),  selanjutnya  dimasukkan  kedalam  gelas  piala  600 ml,  dan  ditambahkan  dengan  100  ml  larutan  ADS. Sampel  kemudian  diekstraksi  selama  60  menit  dari mulai  mendidih.  Sampel  hasil  ekstraksi  disaring menggunakan  cawan  kaca  masir  yang  telah  ditimbang sebelumnya  (B).  Residu  hasil  ekstraksi  dibilas menggunakan  air  panas  dan  aseton.  Pada  oven  105  °C selama  ±  4  jam  sampel  dikeringkan  sampai  beratnya stabil, selanjutnya cawan diangkat dan dinginkan dalam eksikator.  Setelah  dingin,  cawan  dikeluarkan  dari eksikator dan ditimbang (C).
Analisa  selulosa  merupakan  lanjutan  dari  analisa ADF.  Sampel  analisa  ADF  yang  sudah  ditimbang  (C) ditambahi  dengan  larutan  asam  sulfat  (H 2 SO 4 )  72% sampai  terendam  selama  3  jam.  Setelah  3  jam,  residu dibilas  menggunakan  air  panas  dan  aseton.  Selanjutnya dikeringkan  pada  oven  105  °C  selama  ±  4  jam  sampai beratnya  stabil,  angkat  dan  dinginkan  dalam  eksikator. Setelah  dingin,  cawan  dikeluarkan  dari  eksikator  dan ditimbang (D).
Analisis  lignin  merupakan  kelanjutan  dari  analisis ADF dan selulosa. Sampel yang sudah dikeringkan (D), selanjutnya dibakar dalam tanur dengan tempratur ± 600 °C.  Sampel  yang  ditempatkan  dalam  cawan  diangkat dan  dinginkan  dalam  eksikator  dan  ditimbang  beratnya (E).  Rumus  analisis  Van  Soest  dapat  dihitung  dengan persamaan berikut:
% ADF = x 100%
% Selulosa = x 100%
% Lignin = x 100%
 Analisis Fitokimia (Senyawa Metabolik Sekunder)
Analisis  Fitokimia  daun  yang  dilakukan  mengacuh pada  Harborne  (1987).  Kelompok  senyawa  yang  ingin diketahui  dalam  pengujian  ini  adalah alkoloid, flavonoid , kuinon , tannin , saponin , triterpenoid dan steroid . Uji  Alkaloid .  Sebanyak  500  mg  sampel  dilarutkan dalam  5  ml  kloroform  dan  dibasakan  dengan  beberapa tetes  NH4OH,  kemudian  disaring  ke  dalam  tabung reaksi.  Ekstrak  kloroform  kemudian  ditambahi  10  tetes H 2 SO 4 2 M lalu dikocok sehingga terbentuk dua lapisan. Lapisan  asam  yang  berada  di  atas  diambil,  kemudian diteteskan  pada  pelat  tetes  dan  diuji  berturut-turut dengan  pereaksi  Meyer,  pereaksi  Wagner,  dan  pereaksi Dragendrof.  Uji  positif  bila  didapat  endapan  berturut- turut putih, cokelat, dan merah jingga.
Uji  Flavonoid .  Pada  500  mg  sampel  ditambahkan 10  ml  air  panas  kemudian  dididihkan  selama  5  menit dan disaring. Ke dalam 5 ml filtratnya ditambahkan 0.5 g  serbuk  Mg,  1  ml  HCl  pekat,  kemudian  dikocok dengan  kuat.  Uji  positif  ditandai  dengan  munculnya warna merah, kuning atau jingga.
Uji Kuinon . Sebanyak 500 mg sampel ditambahkan ke dalam 10 ml air panas dan dididihkan selama 5 menit lalu  disaring.  Filtratnya  ditambahi  3  tetes  NaOH.  Uji positif ditandai dengan munculnya endapan merah.
Uji  Tanin .  Sebanyak  500  mg  sampel  ditambahkan ke  dalam  50  ml  air  panas  dan  dididihkan  selama  15 menit  lalu  disaring.  Filtratnya  ditambahi  10  ml  FeCl3 1%. Uji positif ditandai dengan munculnya warna hijau kehitaman.
Uji  Saponin .  Pada  500  mg  sampel  ditambahkan  10 ml  air  panas  dan  dididihkan  selama  5  menit  lalu disaring.  Sebanyak  10  ml  fitrat  dikocok  dalam  tabung reaksi  tertutup  selama  10  detik  kemudian  dibiarkan selama  10  menit.  Adanya  saponin  ditunjukkan  dengan terbentuknya buih yang stabil.
Uji Triterpenoid dan Steroid . Uji ini menggunakan pereaksi  Lieberman-Burchard.  Pada  pengujian  ini, sebanyak  500  mg  sampel  dimaserasi  dengan  25  ml etanol  panas  selama  1  jam,  disaring  dan  residunya ditambah  dengan  eter.  Filtrat  ditambah  3  tetes  asam asetat  anhidrat  dan  1  tetes  asam  sulfat  pekat  secara berurutan.  Larutan  dikocok  perlahan  dan  dibiarkan beberapa menit. Uji positif ditandai dengan terbentuknya warna merah atau ungu untuk triterpenoid dan warna hijau atau biru untuk steroid.

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## A. Analisis Proksimat
Analisis  proksimat  pertama  kali  dikembangkan  di Weende  Experiment  Station  Jerman oleh  Hennerberg dan  Stokmann.  Oleh  karena  itu  analisis  ini  sering  juga dikenal  dengan  analisis Weende .  Analisis  proksimat dilakukan  untuk  mengetahui  komponen  utama  dari suatu bahan. Analisis ini menjadi perlu untuk dilakukan karena  menyediakan  data  kandungan  utama  dari  suatu bahan  makanan atau pakan (Soejono 1990). Faktor lain adalah  karena  analisis  proksimat  dalam  makanan berkenaan  dengan  kadar  gizi  dari  bahan  makanan tersebut  (Hui  2006).  Hasil  analisis  golongan  senyawa primer pada sampel daun jabon merah dan putih seperti disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1.  Hasil  analisis  kimia  kandungan  senyawa primer pada daun jabon merah dan putih (%)
Jenis analisis Jabon Merah ( A. macropyllus ) Jabon Putih ( A. cadamba ) Bahan Kering 91.81 96.35 Kadar Abu 6.95 6.72 Protein Kasar 14.78 16.44 Serat Kasar 10.77 14.49 Lemak Kasar 3.15 2.41 Bahan Ekstrak Tanpa Nitrogen (NFE) 56.16 56.29 Calsium (Ca) 1.84 1.47
Phospor (P) 0.32 0.25 Nitrogen (N) 2.36 2.63 Natrium Clorida (NaCl) 0.03 0.03 ADF 31.40 38.72 Selulosa 10.13 2.39 Lignin 21.19 24.21 Sillika 0.07 0.04
Berdasarkan hasil pengujian kimia, daun jabon putih mengandung  kadar  air,  serat  kasar,  ADF  dan  lignin dalam jumlah yang lebih banyak daripada jabon merah. Sebaliknya daun jabon merah lebih banyak mengandung lemak  kasar  dan  selulosa.  Unsur  lainnya  seperti  kadar abu,  NFE,  Ca,  P,  N  dan  silika  jumlah  kandungannya relatif  sama.  Demikian  juga  kandungan  NaCl  dalam persentasi yang sama (Tabel 1).
Banyaknya  kadar  air  pada  daun  jabon  putih  dapat dijadikan sumber pakan yang sesuai karena menentukan tingkat  kesegaran  dan  daya  penerimaan  ( acceptability ) pada ternak, akan tetapi perlu diketahui hijauan ini tidak dapat  bertahan  dalam  waktu  yang  lama.  Hal  ini  sejalan dengan  Winarno  (1997)  menyatakan  bahwa  kandungan air  dalam  bahan  makanan  (pakan)  menentukan acceptability ,  kesegaran,  dan  sangat  berpengaruh terhadap  masa  simpan  suatu  bahan.  Air  dapat mempengaruhi  sifat-sifat  fisik  dan  kimia  dari  suatu bahan.  Disamping  itu,  kandungan  air  dalam  makanan juga dapat mempengaruhi tekstur, kenampakan, dan cita rasa makanan (pakan).
Kadar abu pada analisis proksimat tidak memberikan nilai nutrisi yang penting karena abu tidak mengalami  pembakaran  sehingga  tidak  menghasilkan energi.  Meskipun  abu  terdiri  atas  komponen  mineral, namun  bervariasinya  kombinasi  unsur  mineral  dalam bahan pakan asal tanaman menyebabkan abu tidak dapat dipakai sebagai indeks untuk menentukan jumlah unsur mineral tertentu.  Jumlah abu  dalam bahan pakan hanya penting  untuk  menentukan  perhitungan  bahan  ekstrak tanpa nitrogen (Soejono 1990).
Protein  merupakan  salah  satu  zat  makanan  yang berperan  dalam  penentuan  produktivitas  ternak.  Protein juga  termasuk  salah  satu  zat  penting  yang  sangat dibutuhkan tubuh untuk pertumbuhan dan memperbaiki jaringan  tubuh  yang  rusak.  Perbedaan  kandungan protein pada jabon ini disebabkan perbedaan keberadaan protein  dalam  tumbuhan  berasal  dari  sintesisnya  yang memanfaatkan  ketersediaan  nitrogen  dalam  tanah (Danuwarsa 2006). Perbedaan kandungan nitrogen pada daun  jabon  putih  yang  relatif  banyak  diduga  karena pemanfaatan nitrogen dalam tanah lebih efisien daripada jabon  merah  yang  pemanfaatan  nitrogennya  sedikit lambat  dan  kurang  efisien  karena  terjadi  proses pencucian  pada  permukaan  tanah.  Lokasi  sampel  daun jabon  merah  yaitu  pada  hutan  rakyat  Desa  Cibanteng mempunyai luas ± 1 Ha, dengan jarak tanam 2x2 m dan dilakukan  pemupukan  setiap  3  bulan  sekali.  Lokasi sampel  jabon  putih  yaitu  pada  hutan  rakyat  Desa Cilubang  mempunyai  luas  ±  1  Ha,  dengan  jarak  tanam 2x2 m.
Menurut  (Naibaho  2003;  Wijaya  2011),  jenis  tanah hampir di seluruh wilayah Bogor adalah latosol cokelat kemerahan  dengan  kedalaman  efektif  tanah  lebih  dari 90  cm  dan  tekstur  tanah  yang  halus  dan  bersifat  agak peka  terhadap  erosi.  Kondisi  permukaan  tanah  pada tempat  tumbuh  jabon  merah  sering  terjadi  pencucian oleh air hujan karena letaknya yang sedikit lebih tinggi, sedangkan  kondisi  tanah  pada  tempat  tumbuh  jabon putih rata, sehingga tidak terjadi pengikisan saat musim hujan.  Hal  ini  sejalan  dengan  Sanchez  (1992)  yang melaporkan  bahwa  kehilangan  nitrogen  dari  tanah disebabkan  oleh  penguapan,  pencucian,  denitrifikasi, pengikisan  dan  penyerapan  oleh  tanaman.  Pada  lapisan atas  biasanya  kandungan  N  lebih  tinggi  yaitu  sekitar 95%  dan  umumnya  menurun  dengan  kedalaman  tanah yaitu sekitar 60%.
Lemak  merupakan  bentuk  simpanan  energi  paling utama  dalam  tubuh  di  samping  sebagai  sumber  gizi esensial.  Dikatakan  esensial  karena  dibutuhkan  tubuh, sedangkan tubuh tidak dapat mensintesisnya, sebab baik dalam  tubuh  hewan  dan  manusia  tidak  dapat menambahkan ikatan rangkap pada karbon ke-6 dan ke- 3 pada asam lemak yang ada dalam tubuhnya (Almatsier 2002).  Istilah  lemak  kasar  pada  pengujian  ini menggambarkan  bahwa  zat  dimaksud  bukan  hanya mengandung  senyawa  yang  tergolong  ke  dalam  lemak tetapi  termasuk  senyawa  lain  (Soejono  1990). Perbedaan  kandungan  lemak  pada  daun  jabon  dengan jumlah  yang  lebih  banyak  pada  daun  jabon  merah (Tabel  1),  menunjukkan  bahwa  daun  jabon  merah diduga  banyak  mengandung  lilin  ( wax )  karena  secara morfologi  daun  jabon  merah  lebih  tebal  daripada  daun jabon putih.
Serat  makanan  merupakan  komponen  dalam tumbuhan yang tidak tercerna secara enzimatik menjadi bagian-bagian  yang  dapat  diserap  di  dalam  saluran pencernaan  hewan.  Serat  terdiri  atas  berbagai  substansi di  antaranya  adalah  karbohidrat  kompleks.  Beberapa komponen  serat  makanan  mampu  mengikat  asam  atau garam  empedu,  dengan  demikian  akan  mencegah penyerapan  kembali  dari  usus,  serta  meningkatkan ekskresinya  melalui  feses.    Makanan  yang  rendah  serat menghasilkan  feses  yang  keras  dan  kering  yang  sulit dikeluarkan  dan  membutuhkan  peningkatan  tekanan saluran  cerna  yang  luar  bisa  untuk  mengeluarkannya. Makanan  dengan  kadar  serat  tinggi  cenderung meningkatkan bobot feses, menurunkan waktu transit di dalam saluran cerna, dan dapat mengontrol metabolisme glukosa  dan  lipid  pada  manusia  begitupun  pada  hewan (Almatsier 2002).
Serat  kasar  yang  terdapat  dalam  pakan  sebagian besar  tidak  dapat  dicerna  pada  ternak  non  ruminansia namun  digunakan  secara  luas  pada  ternak  ruminansia. Sebagian  besar  berasal  dari  sel  dinding  tananam  dan mengandung selulosa, hemiselulosa dan lignin. Berdasarkan  hasil  analisis Van  Soest menunjukkan kandungan  selulosa  dan  lignin  pada  kedua  jabon  bisa dikatakan seimbang karena pada jabon putih kandungan
lignin tinggi dan selulosa rendah, sedangkan pada jabon merah  kandungan  lignin  rendah  tapi  kandungan selulosanya  tinggi.  Akan  tetapi  hasil  pengujian  ADF menunjukkan  bahwa  jabon  putih  lebih  banyak mengandung  ADF  daripada  jabon  merah.  ADF mewakili  selulosa  dan  lignin  dinding  sel  tanaman. Analisis  ADF  dibutuhkan  untuk  evaluasi  kualitas  serat untuk pakan ternak ruminansia dan herbivora lain.
Penentuan ADF secara khusus sangat berguna untuk hijauan  karena  terdapat  hubungan  statistik  yang  baik antara  kandungan  ADF  dan  kecernaan  pakan  (Soejono 1990).  Berdasarkan  uraian  ini  maka  jabon  putih  lebih efisien  digunakan  sebagai  pakan  dalam  bentuk  hijauan yang potensial buat  ternak  khususnya  ruminansia (sapi, kambing  dan  domba).  Hijauan  ini  dipandang  aman karena  pada  daun  jabon  putih  mengandung  senyawa metabolik  sekunder  (kuinon  dan  steroid)  dalam  jumlah yang  sedikit.  Daun  jabon  juga  tidak  terdeteksi  adanya senyawa  Saponin  dan  Alkaloid  yang  dapat  bersifat racun  bagi  hewan.  Oleh  karena  itu,  tumbuhan  yang mengandung alkaloid dan saponin biasanya dijauhi oleh hewan gembalaan dan serangga pemakan daun (Kusuma 2011).
Analisis  mineral  yang  dilakukan  pada  pengujian  ini menunjukkan bahwa pada daun jabon merah kandungan kalsium  (Ca)  dan  phospor  (P)  lebih  banyak  daripada jabon  putih,  sebaliknya  persentase  nitrogen  (N)  lebih banyak  pada  jabon  putih,  sedangkan  kandungan  garam (NaCl)  dalam  jumlah  yang  sama  (Tabel  1).  Mineral dibutuhkan dalam jumlah yang seimbang dan memberikan  peranan  yang  sangat  penting,  karena bersama  dengan  vitamin,  mineral  merupakan  bagian dari  enzim  (koenzim)  yang  sangat  diperlukan  dalam menjamin  kelancaran  proses  metabolisme  tubuh  secara normal (Palupi dan Puspitasari 1994).

## B. Analisis Fitokimia
Fitokimia  adalah  suatu  metode  untuk  menentukan ciri  senyawa  aktif  penyebab  efek  racun  atau  efek  yang bermanfaat,  yang  ditunjukan  oleh  ekstrak  tumbuhan kasar yang diuji dengan sistem biologi (Harborne 1987). Metabolik  sekunder  adalah  hasil  metabolisme  yang disintesis  oleh  beberapa  organisme  tertentu  yang  tidak merupakan  kebutuhan  pokok  untuk  hidup  dan  tumbuh. Meskipun demikian, metabolik sekunder dapat berfungsi  sebagai  nutrien  darurat  untuk  pertahanan hidup.  Selain  itu  senyawa-senyawa  metabolik  sekunder juga  merupakan  proses-proses  kimia  jenis  lain  yang terjadi hanya pada spesies tertentu sehingga memberikan  produk  yang  berlainan,  sesuai  dengan spesiesnya  yang  berperan  dalam  kelangsungan  hidup dan perjuangan  menghadapi spesies-spesies lain berupa zat  kimia  untuk  pertahanan,  penarik  seks,  dan  feromen (Manitto 1981).
Hasil  uji  golongan  senyawa  metabolik  sekunder  ini ditandai dengan terjadinya perubahan warna dari serbuk daun jabon setelah ditambahkan pereaksi sesuai dengan uji senyawa yang dilakukan.
Tabel 2.  Hasil pengujian  senyawa metabolik sekunder pada  daun  jabon  merah  dan  putih  ( A. macrophyllus dan A. cadamba ) Senyawa aktif Jenis Daun Jabon merah Jabon putih Alkaloid Flavanoid Kuinon Tanin Saponin Steroid Triterpenoid - - ++ - - ++ - - - + - - + -
Keterangan:  (-):  negatif,  (+):  positif  tapi  lemah.  (++):  positif dan kuat
Tabel 2 menunjukkan hasil bahwa uji fitokimia daun jabon    mengandung  senyawa  aktif  kuinon  dan  steroid. Sebaliknya  senyawa  alkaloid,  flavanoid,  tanin,  saponin dan  triterpenoid  tidak  terdeteksi  pada  kedua  sampel daun jabon. Hasil uji positif seperti tersaji pada Gambar 1.
Gambar 1  Perubahan  warna  yang  terjadi  pada  sampel daun jabon, Steroid pada daun jabon merah (a),  steroid  pada  daun  jabon  putih  (b), kuinon  pada  daun  jabon  merah  (c),  dan kuinon pada daun jabon putih (d)
Senyawa  kuinon  merupakan  senyawa  berwarna  dan mempunyai  kromofor  dasar  seperti  kromofor  pada benzokuinon, yang terdiri atas dua gugus karbonil yang berkonjugasi  dengan  dua  ikatan  rangkap  karbo-karbon. Untuk  tujuan  identifikasi  kuinon  dapat  dibagi  atas empat  kelompok  yaitu: benzokuinon , naftokuinon , antrakuinon dan  kuinon isoprenoid .  Tiga  kelompok pertama biasanya terhidroksilasi dan bersifat fenol serta mungkin  terdapat  dalam  bentuk  gabungan  dengan  gula sebagai  glikosida  atau  dalam  bentuk  kuinol  (Harborne 1987).
Berdasarkan  identifikasi  dan  warna  yang  dihasilkan setelah pengujian, senyawa kuinon hasil uji fitokimia ini
termasuk  dalam  kelompok antrakuinon .  Hal  ini  sejalan dengan Robinson (1991) dan Herbet (1989), menyatakan  bahwa  golongan  kuinon  alam  terbesar terdiri  atas  antrakuinon  dan  kelurga  tumbuhan  yang kaya  akan  senyawa  jenis  ini,  salah  satunya  adalah tumbuhan  dari  famili Rubiacea .  Semua antrakuinon berupa senyawa  kristal bertitik leleh tinggi, larut dalam pelarut  organik  basa.  Senyawa  ini  biasanya  berwarna merah  tetapi  ada  juga  yang  berwarna  kuning  sampai coklat,  larut  dalam  larutan  basa  dengan  membentuk warna  violet  merah.  Senyawa  antrakuinon  banyak terdapat  sebagai  glikosida  yang  bagian  gula  terikat dengan salah satu gugus hidroksil fenolik .
Senyawa  kimia  yang  terkandung  dalam  suatu tanaman  memegang  peranan  penting  dalam  menunjang kegunaan  tanaman  tersebut.  Senyawa  kuinon  yang terdapat sebagai glikosida larut sedikit dalam air, tetapi umumnya  kuinon  lebih  mudah  larut  dalam  lemak  dan akan terekstraksi dari ekstrak tumbuhan kasar bersama- sama  dengan  karotenoid  dan  klorofil.  Senyawa antrakuinon dan kuinon mempunyai  kemampuan sebagai  antibiotik  dan  penghilang  rasa  sakit  serta merangsang  pertumbuhan  sel  baru  pada  kulit  manusia maupun hewan (Harborne 1987).
Steroid  adalah  terpenoid  yang  kerangka  dasarnya terbentuk dari
sistem cincin
siklopentana prehidrofenantrena . Steroid merupakan golongan senyawa metabolik sekunder yang banyak dimanfaatkan sebagai obat. Hormon steroid pada umumnya diperoleh dari  senyawa-senyawa  steroid  alam  terutama  dalam tumbuhan  (Djamal  1988).  Senyawa  steroid  yang terdapat  pada  tumbuhan  diduga  berperan  sebagai pelindung  untuk  menolak  serangan  mikrob  penyebab penyakit  pada  tumbuhan  dan  hewan  (Harborne  1987 dan Robinson 1995).

## KESIMPULAN DAN SARAN

## Kesimpulan
1. Daun  jabon  putih  lebih  banyak  mengandung senyawa  primer  daripada  jabon  merah,  sehingga daun  jabon  putih  dapat  dijadikan  sebagai  sumber pakan alternatif yang memberi nutrisi bagi ternak.
2. Konsentrasi  senyawa  metabolik  sekunder  yang terdeteksi  setelah  pengujian  fitokimia  adalah senyawa aktif kuinon dan steroid. Senyawa aktif ini lebih  banyak  terdapat  pada  daun  jabon  merah, sehingga daun jabon merah dapat dijadikan sebagai tanaman sumber obat.

## Saran
Perlu adanya riset lanjutan terkait dengan analisis proksimat  dan  analisis  fitokimia  pada  jabon  merah  dan putih  dengan  cakupan  contoh  yang  lebih  beragam seperti ketinggian tempat, kelas umur dengan teknik uji yang lebih modern.
a b c d

## DAFTAR PUSTAKA
Almatsier  S.  2002. Prinsip  Dasar  Ilmu  Gizi .  Penerbit: Gramedia Pustaka Utama. Jakarta.
AOAC.  2005.  Official  methods  of  analysis  of  the AOAC.  AOAC  Inc.  Arlington.  Virginia.  Bab  4. Butir 4.5.
Danuwarsa.  2006.  Analoisis  Proksimat  dan  Asam Lemak Pada Beberapa Komoditas Kacang- Kacangan. Buletin Teknik Pertanian. 11 (1). Hlm 5- 8.
Djamal  R.  1988. Tumbuhan  Sebagai  Sumber  Bahan Obat. Pusat Penelitian. Universitas Negeri Andalas.
Halawane  J.E,  Hidayah  H.N,  Kinho  J.  2011.  Prospek
Pegembangan Jabon Merah ( Anthocephalus macrophyllus Roxb.  Havil)  Solusi  Kebutuhan  Kayu Masa  Depan.  Balai  Penelitian  dan  Pegembangan Kehutanan Manado.
Harborne  JB.  1987. Metode  Fitokimia .  Diterjemahkan oleh  Padmawinata  K,  Soediro  I.  ITB,  Bandung. Hlm: 5-15. Harborne, J.B
Herbert,  R.B.,  1989. The  Biosynthesis  of  Secondary Metabolism. Campman and Hall 29 West 35 th Street, New York.
Hui YH. 2006. Handbook of Food Science, Technology, and  Engineering  Volume  1 .  Taylor  and  Francis Group. Boca Raton.
Kusuma  R.  2011.  Identifikasi  Senyawa  Bioaktif  pada Tumbuhan  Meranti  Merah  ( Shorea  smithiana Symington ).  Mulawarman  Scientifie.  10  (2).  Hlm 199-206.
Krisnawati  H,  Kallio  M,  Kanninem  M.  2011. Anthocepalus  cadamba Miq.  Ekologi,  Silvikultur, dan Produktivitas. CIFOR. Bogor. Indonesia.
Manitto P. 1981. Biosintesis Produk Alami.
Terjemahan:  Koensoenmardiyah.  IKIP  Semarang Press. Semarang.
Naibaho  R.  2003.  Pengaruh  pupuk  Phonska  dan pengapuran  terhadap  kandungan  unsur  hara  NPK dan  pH  beberapa  tanah  hutan.  [skripsi].  Fakultas Kehutanan,  Jurusan  Menejemen  Hutan,  Institut Pertanian Bogor.
Orwa C, Mutua A, Kindt R, Jamnadass R, dan Anthony S.  2009.  Agroforestry  tree  database:  a  tree  species reference  and  selection  guide  version  4.0.  [diunduh 15  Desember  2013].  Tersedia  pada:  http://  www. Wordagroforestry.org/treedb2/AFTPDFS/ Anthoceph alus cadamba .pdf.
Palupi  NS,  Puspitasari  NL.  1994.  Pengaruh  Serat Makanan  dan  Senyawa  Antinutrisi  dalam  Tempe Terhadap  Ketersediaan  Mineral  Bagi  Tubuh. Laporan  Penelitian.  Bogor:  Fakultas  Teknologi Pertanian, Institut Pertanian Bogor.
Robinson  T.  1991,  1995. The  Organic  Constituen  of HigherPlants. 6 th Edition. Department of Biochemistry. University of Massachusetts.
Robinson  T.  1995.  Kandungan  Organik  Tumbuhan Tinggi. ITB : Bandung
Sanches  PA.  1992.  Sifat  dan  Pengelolaan  Tanah Tropika. Jurusan Ilmu Tanah. North State University. ITB. Bandung (Terjemahan).
SNI  01-2891-1992. Cara  Uji  Makanan  dan  Minuman .
Pusat  Standarisasi  Industri,  Departemen  Industri. Jakarta.
Soejono  M.  1990.  Petunjuk  Laboratorium  Analisis  dan Evaluasi  Pakan.  Fakultas  Peternakan  Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta.
Wijaya  A.  2011.  Pengaruh  Pemupukan  dan  Pemberian Kapur  Terhadap  Pertumbuhan  dan  Daya  Hasil Kacang  Tanah  ( Arachis  hypogaea L.).  [skripsi].
Fakultas Pertanian, Jurusan Agronomi dan Holtikultura, Institut Pertanian Bogor.
Winarno  F.G.  1997. Kimia  Pangan  dan  Gizi .  Penerbit PT.  Gramedia  Pustaka  Utama.  Jakarta.  Indonesia.