## PENGARUH PENAMBAHAN EKSTRAK KULIT TERONG UNGU PADA TAHU YANG MENGANDUNG FORMALIN
Agnes Rantesalu*, Winioliski L. O. Rohi Bire, Marni Tangkelangi, Aldiana Astuti (Department Teknologi laboratorium medik, Poltekkes Kemenkes Kupang) Email Korespondensi: agnesransh@gmail.com

## Abstract
Testing for formalin content in food is usually done through laboratory tests using chemicals, making  it  difficult  for  people  to  use  it.  As  an  alternative,  formalin  testing  can  be  done  with natural ingredients containing anthocyanins.  This study aims to determine the formalin test on  purple  eggplant  skin.  This  study  is  an  experimental  study.  The  method  used  is colorimetry by extracting anthocyanins from purple eggplant and testing them on tofu given formalin.  Materials  such  as  white  tofu,  formalin  solution,  distilled  water,  ethanol,  purple eggplant,  and  label  paper.  The  tools  used  in  this  study  were  hot  plates,  dropper  pipes, stirring  rods,  mortars,  evaporators,  spray  bottles,  bulbs,  and  glassware  commonly  used  in chemistry  laboratories.  This  study  was  conducted  in  May  -  December  2023  at  the  Kupang City  Health  Laboratory.  The  results  showed  an  efficient  natural  method  for  identifying formalin  in  food  is  to  use  eggplant  skin  extract.  The  ideal  anthocyanin  content  in  eggplant skin  extract  can  be  maintained  using  the  right  extraction  method.  As  a  result,  the  use  of eggplant skin extract  as a test material for formalin can be a practical and environmentally friendly  substitute.  In  conclusion,  the  use  of  eggplant  skin  extract  can  be  a  reliable  and environmentally friendly solution for detecting formalin in food products. Suggestions are to test the effectiveness of this eggplant skin extract on various types of food. Thus, it can be known how far the reliability of this method in detecting formalin accurately.
Keywords : Purple eggplant; Formalin; Tofu; Anthocyanin; Colorimetry

## Abstrak
Pengujian  kandungan  formalin  pada  makanan  biasanya  dilakukan  melalui  pemeriksaan laboratorium  dengan  menggunakan  bahan  kimia  sehingga  menyulitkan  masyarakat  dalam menggunakannya.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  pengujian  formalin  pada  kulit terong  ungu.  Penelitian  ini  merupakan  penelitian  eksperimen.  Metode  yang  digunakan adalah kolorimetri dengan mengekstraksi antosianin dari terong ungu dan mengujinya pada tahu yang diberi formalin. bahan-bahan seperti tahu putih, larutan formalin, aquades, etanol, terong  ungu  ,  dan  kertas  label.  Alat  alat  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah  hot plate, pipet tetes, batang pengaduk, mortal, evaporator, botol semprot, bulb,  dan peralatan gelas yang umum digunakan di laboratorium kimia. Penelitian ini dilakukan pada bulan Mei – desember  2023  di  UPT  Laboratorium  Kesehatan  Kota  Kupang.  Hasil  penelitian menunjukkan  bahwa  metode  alami  yang  efisien  untuk  mengidentifikasi  formalin  dalam makanan  adalah  dengan  menggunakan  ekstrak  dari  kulit  terong.  Kandungan  antosianin yang ideal dalam  ekstrak kulit terong dapat dipertahankan menggunakan metode ekstraksi yang  tepat.  Hasilnya,  penggunaan  ekstrak  kulit  terong  sebagai  bahan  uji  formalin  dapat menjadi  pengganti  yang  praktis  dan  ramah  lingkungan.  Lebih  jauh  lagi,  hasil  proses ekstraksi  yang  optimal  akan  meningkatkan  ketepatan  deteksi  formalin  dalam  makanan. Kesimpulannya,  penggunaan  ekstrak  kulit  terong  dapat  menjadi  solusi  yang  andal  dan ramah  lingkungan  untuk  mendeteksi  formalin  dalam  produk  makanan.  Saran  untuk penelitian selanjutnya adalah menguji efektivitas ekstrak kulit terong ini pada berbagai jenis makanan.  Dengan  demikian,  dapat  diketahui  sejauh  mana  kehandalan  metode  ini  dalam mendeteksi formalin secara akurat.
Kata Kunci: Terong ungu; Formalin; Tahu; Antosianin; Kolorimetri

## PENDAHULUAN
Dalam  produksi  pangan,  penggunaan  bahan  tambahan  pangan  dalam  jumlah  berlebih dan bahan pengawet pangan ilegal telah menjadi ancaman kesehatan masyarakat terbesar 1 2 .  Misalnya,  natrium  nitrit  telah  banyak  digunakan  untuk  meningkatkan  warna  dan memperpanjang  masa  simpan  daging  olahan,  ikan,  dan  beberapa  jenis  keju.  Kandungan nitrit  yang  diizinkan  berada  dalam  kisaran  60-150  ppm  pada  produk  olahan.  Sebaliknya, konsumsi  nitrit harian dalam  jumlah yang lebih tinggi dapat menyebabkan keracunan pada manusia, khususnya methemoglobinemia 3 . Natrium  benzoat pertama kali diizinkan sebagai bahan tambahan pangan oleh Badan Pengawas Obat dan Makanan Amerika Serikat (FDA) dan  terdaftar  sebagai  E211  dalam  produk  pangan  Eropa.  Dengan  tujuan  menghambat pertumbuhan mikroorganisme (bakteri, jamur, dan serangga), natrium  benzoat telah umum digunakan  dalam  makanan  dan  minuman  yang  bersifat  asam 4 .  Namun,  kemungkinan masalah kesehatan yang disebabkan oleh natrium benzoat meliputi peradangan, gangguan hiperaktivitas  defisit  perhatian,  pengendalian  nafsu  makan,  stres  oksidatif,  alergi,  dan perubahan menjadi karsinogen 5 .
Urea, formalin, dan boraks dilarang digunakan dalam produksi  pangan karena sifatnya yang sangat beracun dan bahkan dapat menyebabkan kanker 6 . Formalin menimbulkan rasa nyeri disertai nekrosis selaput lendir, ulserasi, dan inflamasi apabila masuk ke dalam saluran pencernaan. Penggunaan formalin pada makanan menimbulkan keracunan pada manusia, yaitu nyeri perut disertai muntah, sakit kepala, kejang, dan tidak sadarkan diri hingga koma, serta dapat menimbulkan kerusakan pada susunan saraf pusat dan ginjal 7 .
Secara  umum,  bahan  kimia  tersebut  telah  dianalisis  secara  kuantitatif  dengan spektrofotometri UV-vis, kromatografi (kromatografi gas dan kromatografi cair kinerja tinggi) atau  metode  elektrokimia.  Meskipun  teknik-teknik  yang  disebutkan  dapat  menganalisis secara  kuantitatif  dengan  presisi  dan  akurasi  yang  tinggi  (bahkan  pada  konsentrasi  yang sangat  rendah),  prosedur  analisis  melibatkan  multi-langkah  dengan  persyaratan keterampilan tinggi, membatasi aplikasi di luar laboratorium dengan adaptasi cepat 8 .
Di  sisi  lain,  beberapa  uji  kualitatif  berdasarkan  pengamatan  warna  reaksi  bahan  kimia dan  indikator  telah  dikembangkan.  Ungu  untuk  mendeteksi  formalin  menggunakan  asam kromotropik,  merah  muda  untuk  mendeteksi  formalin  menggunakan  fenilhidrazina,  merah untuk  mendeteksi  boraks  menggunakan  kurkumin 9 .  Secara  umum,  uji  kualitatif  (seperti  kit uji)  dapat  menentukan  keberadaan  beberapa  bahan  kimia  dengan  batas  deteksi  spesifik untuk waktu yang sangat singkat, tergantung pada warna dan intensitas warna yang diamati 10 . Namun demikian, sebagian besar indikator umumnya beracun, mahal dan tidak tersedia dalam  kehidupan.  Oleh  karena  itu,  indikator  alami,  terutama  ekstrak  yang  berasal  dari tumbuhan,  saat  ini  telah  dikembangkan  sebagai  biosensor  untuk  mendeteksi  bahan tambahan makanan dan bahan pengawet makanan illegal 11 .
Senyawa  antosianin  bersifat  polar,  sehingga  senyawa  tersebut  dapat  diekstraksi dengan  pelarut  polar  seperti  air,  etanol  dan  metanol.  Antosianin  sering  diekstraksi  dengan etanol.  Namun  paling  efektif  jika  menggunakan  metanol.  Warna  pigmen  antosianin  adalah merah, biru, dan ungu. Antosianin biasanya dapat ditemukan pada buah-buahan, baik kulit maupun  dagingnya,  bunga,  dan  juga  terdapat  pada  sayuran.  Pigmen  ini  berubah  menjadi merah pada pH asam dan berubah menjadi ungu dan kemudian berubah menjadi biru pada pH  basa.  Sehingga  dapat  juga  digunakan  sebagai  indikator  asam dan  juga  indikator  basa. Antosianin dapat digunakan untuk mendeteksi keberadaan senyawa kimia seperti formalin. Sifat asam formalin disebabkan adanya asam format akibat oksidasi formaldehida, dan jika bercampur dengan asam kuat maka antosianin akan mudah bereaksi 12 . Beberapa penelitian yang  berhasil  mengekstraksi  antosianin  dari  bahan  alami  antara  lain:  Limbah  Kulit Manggis 13 , Daun Pisang (Musa paradisiaca L) 14 , Kastuba (Euphorbia pulcherrima) 15 .
Diharapkan dengan adanya penelitian ini dapat  memberikan solusi alternatif pengujian formalin  pada  tahu  dengan  menggunakan  ekstrak  kulit  terong.  Tujuan  penelitian  adalah untuk  menganalisis  Pengaruh  Penambahan  Ekstrak  Kulit  Terong  Untuk  Mendeteksi Keberadaan  Formalin  Pada  Tahu.  Penelitian  ini  diharapkan  dapat  mengetahui  apakah kandungan  antosianin  pada  kulit  terong  dapat  digunakan  untuk  mendeteksi  keberadaan
formalin. Penelitian ini juga diharapkan dapat dijadikan alternatif pengujian formalin mandiri bagi masyarakat.

## METODE PENELITIAN

## Desain
Jenis Penelitian ini merupakan studi eksperimental menggunakan bahan-bahan seperti tahu putih, larutan formalin, aquades, etanol, terong ungu , dan kertas label. Alat alat yang digunakan  dalam  penelitian  ini  adalah hot  plate ,  pipet  tetes,  batang  pengaduk,  mortal, evaporator, botol semprot, bulb , dan peralatan gelas yang umum digunakan di laboratorium kimia.  Penelitian  ini  dilakukan  pada  bulan  Mei – desember  2023  di  UPT  Laboratorium Kesehatan Kota Kupang.
Pembuatan  Larutan  Formalin  1%  : Diambil  2,7  ml  formalin  37%  lalu  dimasukkan dalam  labu  ukur  100  ml.  Kemudian  diencerkan  dengan  aquades  sampai  tanda  batas  dan dihomogenkan. Pembuatan  sediaan  tahu  berformalin  : Ditimbang  tahu  sebanyak  50 gram. Lalu direndam dalam larutan formalin 1 % selama 1 jam. Selanjutnya tahu ditumbuk dalam mortal. Dan ditambahkan aquades sampai 100 ml. Kemudian disaring.
Pembuatan Ekstrak Kulit Terong Ungu : Langkah pertama preparasi sampel adalah memisahkan bagian kulit terong ungu dari dagingnya, lalu dicuci hingga bersih. Kulit terung ungu kemudian dimasak selama 7 menit, setelah itu dihaluskan dan dibekukan pada suhu - 27 o C.  Sampel  beku  sebanyak  350  g  dihaluskan  dengan  blender  selama  3  menit  dengan penambahan 700 mL pelarut (pelarut : sampel = 1:2). Pelarut terdiri dari etanol 96%, asam asetat,  dan  akuades  dengan  perbandingan  masing-masing  25:1:5.  Selanjutnya  ekstrak ditiriskan  dengan  kain.  Filtrat  dipanaskan  dalam  penangas  air  pada  suhu  50 o C  untuk menguapkan  etanol  sehingga  diperoleh  filtrat  yang  lebih  pekat.  Filtrat  pigmen  kemudian disaring  menggunakan  kertas  saring.  Selanjutnya  filtrate  diputar  dengan  magnetic  stirerr selama 15 menit. Setelah itu, supernatant (hasil dari diputar dengan magnetic stirerr dengan bobot jenis yang lebih rendah) disimpan dalam botol kaca gelap di lemari es untuk analisis lebih lanjut.
Identifikasi  Formalin Menggunakan Ekstrak Kulit Terong Ungu : Aquades diambil sebanyak  3 ml  dan  diberi  label  untuk  masing-masing  perbandingan. Teteskan  ekstrak kulit terong  ungu  sebanyak  10  tetes  dengan  masing-masing  perbandingan  yaitu  1:1,  1:2,  1:3. Kemudian dipanaskan selama 1 menit, lalu amati perubahan warnanya. Perasan tahu yang direndam formalin 1% diambil sebanyak 3 ml. Teteskan ekstrak kulit terong ungu pada tahu dengan masing-masing perbandingannya yaitu 1:1, 1:2, 1:3. Kemudian dipanaskan selama 1  menit,  lalu  diamati  perubahan  warnanya.  Penelitian  dilakukan  3  kali  pengulangan  pada masing-masing perbandingan pada waktu yang sama.

## HASIL PENELITIAN
Hasil  ekstraksi  350  gram  sampel  kulit  terong  ungu  didapatkan  ekstrak  kental  dari  kulit terong ungu yaitu sebanyak 8,4351 gram. Rendamen ekstrak etanol kulit terong ungu yang diperoleh sebesar 58,61 %. Warna dari antosianin dipengaruhi oleh kondisi asam dan basa. Warna  antosianin  menjadi  merah  jika  berada  dalam  suasana  asam,  sedangkan  menjadi hijau kebiruan jika berada dalam suasana basa seperti pada Gambar 1 dan Tabel 1.
Tabel 1. Uji ekstrak pada HCl dan NaOH Pelarut Perbandingan warna Hasil Penelitian Penelitian [16] HCL Merah Merah NaOH Berubah menjadi hijau Kebiruan dan akhirnya memudar Berubah menjadi hijau Kebiruan dan memudar perlahan-lahan
Gambar 2 menunjukkan hasil ekstrak tahu yang mengandung formalin dengan menunjukkan warna  merah.  Hal  ini  sama  dengan  yang  didapatkan  pada  uji  meggunakan  ekstrak  kulit terong  ungu.  Hasil  tersebut  menunjukkan  bahwa  formalin  telah  dicampurkan  ke  dalam ekstrak  tahu  dan  kulit  terong  ungu.  Warna  merah  yang  muncul  dapat  menjadi  indikasi adanya bahan kimia berbahaya dalam kedua ekstrak tersebut.

## Gambar 2. Uji formalin pada tahu

## PEMBAHASAN
Hasil  sampel  kulit  terong  ungu  seberat  350  gram  menghasilkan  ekstrak  kental  sekitar 8,4351  gram.  Persentase  kulit  terong  ungu  yang  terpengaruh  oleh  etanol  adalah  sekitar 586,1%.  Kondisi  asam  dan  basa  memengaruhi  warna  antosianin.  Berdasarkan  hasil penelitian  terdahulu  ,  diketahui  bahwa  pH  asam  akan  menghasilkan  warna  merah  muda hingga merah terang, sedangkan pH basa akan menghasilkan warna biru hingga ungu tua pada  ekstrak  antosianin  kulit  terong  ungu.  Selain  itu,  penelitian  juga  menunjukkan  bahwa kadar  antosianin  dalam  kulit  terong  ungu  dapat  meningkat  jika  dilakukan  proses  ekstraksi dengan  penambahan  asam  sitrat 17 . Hal  ini  sama  seperti  yang  didapatkan  pada  hasil penelitian, ketika antosianin berada dalam suasana asam, warnanya menjadi merah seperti pada gambar 1 dan table 1. Tetapi, ketika berada dalam suasana basa, warnanya menjadi hijau  kebiruan.  Perubahan  warna  disebabkan  oleh  tingkat  pH  yang  memengaruhi  struktur molekul antosianin.  Reaksi ini umumnya digunakan dalam  ilmu pangan untuk menciptakan warna-warna  cerah  dalam  berbagai  produk.  Tingkat  pH  memainkan  peran  penting  dalam menentukan warna molekul antosianin, dengan kondisi asam menghasilkan rona merah dan kondisi  basa  menghasilkan  warna  hijau  kebiruan.  Sifat  perubahan  warna  ini  digunakan dalam ilmu pangan untuk meningkatkan daya tarik visual berbagai produk 18,19,20,21 .
Senyawa  antosianin  ditunjukkan  pada  panjang  gelombang  yang  diperoleh.  Panjang gelombang  yang  diperoleh,  akan  dibandingkan  dengan  penelitian  lainnya.  Adanya perbedaan  sumber  antosianin  dan  adanya  perbedaan  pelarut  yang  digunakan,  panjang gelombang  yang  didapatkan  pun  berbeda.  Oleh  karena  itu,  perbandingan  panjang gelombang  antosianin  antara  penelitian  yang  satu  dengan  yang  lain  dapat  memberikan informasi tambahan mengenai karakteristik senyawa tersebut. Selain itu, perbedaan panjang gelombang  antosianin  juga  dapat  mempengaruhi  warna  dan  stabilitas  senyawa  tersebut dalam  aplikasi  tertentu 22 .  Senyawa  antosianin  dari  ekstrak  etanol  kulit  terong  ungu  diduga merupakan  jenis  sianidin.  Sianidin  merupakan  salah  satu  jenis  antosianin  yang  umum ditemukan dalam kulit terong ungu 23,24,25,26 .
Serapan khas yang diberikan dari ciri antosianin adalah pada panjang gelombang 240 - 282  nm  dan  pada  panjang  gelombang  516  -  520  nm 27 .  Penelitian  lain  juga  didapatkan serapan  pada  panjang  gelombang  547  nm  dan  pada  panjang  gelombang  536,4  nm 16 . Perbedaan  panjang  gelombang  serapan  antosianin  dapat  disebabkan  oleh  variasi  metode ekstraksi  dan  perbedaan  jenis  pelarut  yang  digunakan  dalam  penelitian 28,29,30 .  Hal  ini menunjukkan pentingnya mempertimbangkan faktor-faktor tersebut dalam analisis senyawa antosianin  dari  ekstrak  kulit  terong  ungu. Variasi  panjang  gelombang  serapan  antosianin dapat  dipengaruhi  oleh  struktur  kimia  molekul  tersebut,  serta  kondisi  lingkungan  selama ekstraksi  dilakukan.  Oleh  karena  itu,  penelitian  lebih  lanjut  diperlukan  untuk  memahami faktor-faktor  yang  memengaruhi  panjang  gelombang  serapan  antosianin  secara  lebih mendalam 31 .
Faktor  lingkungan tumbuhnya  tanaman  sampel  seperti ketinggian  tempat,  suhu  udara, kesuburan  tanah  dan  cahaya  juga  mungkin  merupakan  penyebab  perbedaan  yang didapatkan. Selain itu, curah hujan dan tingkat kelembaban udara juga dapat memengaruhi pertumbuhan  tanaman 32 .  Semua  faktor  lingkungan  tersebut  perlu  dipertimbangkan  secara holistik  untuk  memahami  perbedaan  yang  terjadi  pada  tanaman  sampel. Semakin  tinggi posisi  dari  permukaan  laut,  maka  suhu  udara  ditempat  tersebut  pun  akan  semakin  rendah dan  intensitas  cahaya  di  tempat  tersebut  juga  akan  semakin  besar,  sehingga akan   menyebabkan  laju  biosintesa  antosianin  semakin  besar 33 .  Selain  itu,  faktor  genetik dari  tanaman  terong  ungu  juga  dapat  memengaruhi  kandungan  antosianin  dalam  ekstrak kulitnya 34 .
Formalin memiliki unsur aldehid yang mudah bereaksi dengan protein, karenanya ketika disiramkan pada tahu formalin akan mengikat protein mulai dari permukaan tahu sampai ke bagian  dalamnya  sehingga  mengakibatkan  protein  mati 35 .  Karena  protein  pada  tahu  telah berikatan  dengan  formalin  maka  protein  tahu  tersebut  tidak  bereaksi  dengan  pigmen antosianin.  Hal  ini  mengakibatkan  antosianin  stabil.  Sehingga,  tahu  yang  telah  direndam dalam  formalin  akan  tetap  terlihat  segar  dan  berwarna  cerah  meskipun  sebenarnya  sudah tidak segar lagi. Namun, konsumsi tahu yang mengandung formalin dapat membahayakan kesehatan karena formalin merupakan bahan kimia berbahaya.
Antosianin tidak mengalami perubahan warna, tidak terbentuk endapan atau uap ketika dicampurkan  dengan  sampel  tahu  yang  mengandung  formalin 36 .  Dengan  demikian, penggunaan  formalin  pada  tahu  dapat  mempengaruhi  stabilitas  antosianin  dalam  sampel. Oleh  karena  itu,  penting  untuk  memperhatikan  kandungan  bahan  kimia  yang  digunakan dalam proses pembuatan makanan agar kualitasnya tetap terjaga. Selain itu, konsumsi tahu yang  mengandung  formalin  juga  dapat  menyebabkan  masalah  kesehatan  jangka  panjang seperti gangguan ginjal dan kanker. Oleh karena itu, penting bagi produsen makanan untuk tidak  menggunakan  bahan  kimia  berbahaya  dalam  proses  produksi  agar  konsumen terlindungi dari risiko kesehatan yang tidak diinginkan.

## SIMPULAN DAN SARAN
Berat  ekstrak  yang  dihasilkan  yaitu  350  gram,  dengan  kandungan  etanol  586,1%. Warna ekstrak dipengaruhi oleh kondisi asam dan basa, dengan antosianin berwarna merah pada  kondisi  asam  dan  kuning  pada  kondisi  basa.  Senyawa  antosianin  ditunjukkan  pada panjang  gelombang  yang  diperoleh,  merupakan  perbedaan  sumber  antosianin  dan perbedaan  pelarut  yang  diperoleh  pun  berbeda,  dan  jenis  sianidin  merupakan  jenis
antosianin  yang  umum  ditemukan.  Serapan  khas  dari  ciri  antosianin  adalah  pada  panjang gelombang 240-282 nm, 516-520 nm, 547 nm, 536,4 nm, dan 547 nm. Perbedaan panjang gelombang  serapan  antosianin  dapat  disebabkan  oleh  variasi  ekstraksi  dan  jenis  pelarut. Formalin  adalah  unsur  aldehid  yang  mudah  bereaksi  dengan  protein,  yang  berbeda  dan berwarna  cerah  tahu  yang  telah  direndam  dalam  formalin.  Antosianin  tidak  mengalami perubahan  warna  dan  terbentuk  endapan  ketika  dicampur  dengan  sampel  tahu  yang mengandung  formalin.  Penggunaan  formalin  pada  tahu  dapat  mempengaruhi  stabilitas antosianin dalam sampel.
Kesimpulannya adalah ekstrak kulit terong dapat digunakan sebagai bahan alami yang efektif  dalam  mendeteksi  formalin  pada  makanan.  Proses  ekstraksi  yang  tepat  akan memastikan  kandungan  antosianin  dalam  ekstrak  kulit  terong  tetap  optimal.  Dengan demikian,  penggunaan  ekstrak  kulit  terong  sebagai  bahan  uji  formalin  dapat  menjadi alternatif  yang  ramah  lingkungan  dan  efektif.  Selain  itu,  hasil  yang  maksimal  dari  proses ekstraksi  juga  akan  meningkatkan  keakuratan  dalam  mendeteksi  formalin  pada makanan. Saran untuk penelitian selanjutnya adalah menguji efektivitas ekstrak kulit terong ini  pada  berbagai  jenis  makanan.  Dengan  demikian,  dapat  diketahui  sejauh  mana kehandalan metode ini dalam mendeteksi formalin secara akurat.

## DAFTAR PUSTAKA
1 Y.  Zhong,  L.  Wu,  X.  Chen,  Z.  Huang,  and  W. Hu,  “Effects  of  Food -Additive- Information on Consumers’ Willingness to Accept Food with Additives,” Int J Environ Res Public Health , vol. 15, no. 11, p. 2394, Oct. 2018, doi: 10.3390/ijerph15112394.
2 S. Sambu, U. Hemaram, R. Murugan, and A. A. Alsofi, “ Toxicological and Teratogenic Effect of Various Food Additives: An Updated Review,” Biomed Res Int , vol. 2022, pp. 1 – 11, Jun. 2022, doi: 10.1155/2022/6829409.
3 M. Karwowska and A. Kononiuk, “Nitrates/Nitrites in Food— Risk for Nitrosative Stress and  Bene fits,” Antioxidants ,  vol.  9,  no.  3,  p.  241,  Mar.  2020,  doi: 10.3390/antiox9030241.
4 F.  Alderees,  S.  Akter,  R.  Mereddy,  and  Y.  Sultanbawa,  “Antimicrobial  Activity  of Nanoencapsulated Essential Oils of Tasmannia lanceolata, Backhousia citriodora and Syzygium  anisatum  against  Weak-Acid  Resistant  Zygosaccharomyces  bailii  in  Clear Apple  Juice,” Beverages , vol. 7, no. 3, p. 67, Sep. 2021, doi: 10.3390/beverages7030067.
5 Ł.  J.  Walczak - Nowicka  and  M.  Herbet,  “Sodium  Benzoate— Harmfulness  and Potential Use in Therapies for Disorders Related to the Nervous System: A Review,” Nutrients , vol. 14, no. 7, p. 1497, Apr. 2022, doi: 10.3390/nu14071497.
6 I.  Hasan,  M.  Pervin,  Md.  A.  Kobir,  S.  H.  Sagor,  and  M.  R.  Karim,  “Effect  of formaldehyde and urea contaminated feed exposure into the liver of young and adult pigeons  (Columba  livia),” Vet  World ,  vol.  14,  no.  3,  pp.  769 – 776,  Mar.  2021,  doi: 10.14202/vetworld.2021.769-776.
7 S. C. Sarode et al. , “Accidental Local Infiltration of Formalin into the Buccal Mucosa: A Cas e  Report  and  Review  of  the  Literature,” Clin  Pract ,  vol.  8,  no.  1,  p.  1040,  Feb. 2018, doi: 10.4081/cp.2018.1040.
8 D.  Carvalho,  C.  Pinho,  R.  Oliveira,  F.  Moreira,  and  A.  I.  Oliveira,  “Chromatographic Methods  Developed  for  the  Quantification  of  Quercetin  Extracted  from  Natural Sources: Systematic Review of Published Studies from 2018 to 2022,” Molecules , vol. 28, no. 23, p. 7714, Nov. 2023, doi: 10.3390/molecules28237714.
9 N.  T.  T.  Nguyen,  N.  P.  Nguyen,  and  T.  Thanh  Hoai,  “Ethical  leadership,  corporate social responsibility, firm reputation, and firm performance: A serial mediation model,” Heliyon , vol. 7, no. 4, p. e06809, 2021, doi: 10.1016/j.heliyon.2021.e06809.
10 I. G. Munteanu and C. Apetrei, “Analytical Methods Used in Determining Antioxidant A ctivity:  A  Review,” Int  J  Mol  Sci ,  vol.  22,  no.  7,  p.  3380,  Mar.  2021,  doi: 10.3390/ijms22073380.
11 A.  Hitabatuma,  P.  Wang,  X.  Su,  and  M.  Ma,  “Metal -Organic  Frameworks-Based Sensors  for  Food  Safety,” Foods ,  vol.  11,  no.  3,  p.  382,  Jan.  2022,  doi: 10.3390/foods11030382.
12 S.  R.  Dewi,  “Identifikasi  Formalin  Pada  Makanan  Menggunakan  EKstrak  Kulit  Buah Naga,” Jurnal Nasional Ilmu Kesehatan , vol. 1, no. 2, pp. 1 – 16, 2019.
13 R.  Farida  and  F.  C.  Nisa,  “Ekstraksi  Antosianin  Limbah  Kulit  Manggis  Metode Microwave  Assisted  Extraction  (Lama  Ekstraksi  Dan  Rasio  Bahan :  Pelarut),” Jurnal Pangan dan Agroindustri , vol. 3, no. 2, pp. 362 – 373, 2015.
14 L.  N.  Lestario,  M.  K.  W.  C.  Yoga,  and  A.  I.  Kristijanto,  “STABILITAS  ANTOSIANIN JANTUNG  PISANG  KEPOK  (Musa  paradisiaca  L)  TERHADAP  CAHAYA  SEBAGAI PEWARNA  AGAR- AGAR,” Jurnal  Agritech ,  vol.  34,  no.  04,  pp.  374 – 381,  2015,  doi: 10.22146/agritech.9431.
15 R.  R.  Maulid and  A.  N.  Laily,  “Kadar Total  Pigmen  Klorofil  dan Senyawa  Antosianin Ekstrak  Kastuba  Kadar  Total  Pigmen  Klorofil  dan  Senyawa  Antosianin  Ekstrak Kastuba (Euphorbia pulcherrima) Berdasarkan Umur Daun,” 2015, pp. 225– 230. 16 A.  Rantesalu,  W.  L.  O.  Rohi  Bire,  M.  Tangkelangi,  and  N.  M.  Susilawati,  “Effect  of shallot  peel extract  in tofu to detect the presen ce of formaldehyde,” Public Health of Indonesia , vol. 8, no. 4, pp. 131 – 135, Dec. 2022, doi: 10.36685/phi.v8i4.646.
17 H. E. Khoo, A. Azlan, S. T. Tang, and S. M. Lim, “Anthocyanidins and anthocyanins: colored  pigments  as  food,  pharmaceutical  ingredients,  and  the  potential  health benefits,” Food  Nutr  Res ,  vol.  61,  no.  1,  p.  1361779,  Jan.  2017,  doi: 10.1080/16546628.2017.1361779.
18 R. Pandiselvam et  al. , “The influence of non -thermal technologies on color  pigments of  food materials:  An  updated  review,” Curr  Res  Food  Sci ,  vol.  6,  p.  100529,  2023, doi: 10.1016/j.crfs.2023.100529.
19 R. Abedi-Firoozjah et al. , “Application of Red Cabbage Anthocyanins as pH -Sensitive Pigments in Smart Food Packaging and Sensors,” Polymers (Basel) , vol. 14, no. 8, p. 1629, Apr. 2022, doi: 10.3390/polym14081629.
20 V.  Rakić  and  N.  Poklar  Ulrih,  “Influence  of  pH  on  color  variation  and  stability  of cyanidin  and  cyanidin  3- O- β - glucopyranoside in aqueous solution,” CyTA  -  Journal of Food , vol. 19, no. 1, pp. 174 – 182, Jan. 2021, doi:
10.1080/19476337.2021.1874539.
21 J. S. Câmara et al. , “Behind the Scenes of Anthocyanins— From the Health Benefits to Potential Applications in Food, Pharmaceutical and Cosmetic Fields,” Nutrients , vol. 14, no. 23, p. 5133, Dec. 2022, doi: 10.3390/nu14235133.
22 E.  Gençdağ,  E.  E.  Özdemir,  K.  Demirci,  A.  Görgüç,  and  F.  M.  Yılmaz, “Copigmentation  and  stabilization  of  anthocyanins  using  organic  molecules  and encapsulation  techniques,” Curr  Plant  Biol ,  vol.  29,  p.  100238,  Jan.  2022,  doi: 10.1016/j.cpb.2022.100238.
23 Q.  Qi et  al. ,  “Anthocyanins  and  Proanthocyanidins:  Chemical  Structures,  Food Sources,  Bioactivities,  and  Product  Development,” Food  Reviews  International ,  vol. 39, no. 7, pp. 4581 – 4609, Aug. 2023, doi: 10.1080/87559129.2022.2029479.
24 G. Yang, L. Li, M. Wei, J. Li, and F. Yang, “SmMYB113 Is a Key Transcription Factor Responsible  for  Compositional  Variation  of  Anthocyanin  and  Color  Diversity  Among Eggplant Peels,” Front Plant Sci , vol. 13, Mar. 2022, doi: 10.3389/fpls.2022.843996.
25 N.- N. Condurache (Lazăr), C. Croitoru, E. Enachi, G. - E. Bahrim, N. Stănciuc, and G. Râpeanu, “Eggplant Peels as a Valuable Source of Anthocyanins: Extraction, Thermal Stability  and  Biological  Activities,” Plants ,  vol.  10,  no.  3,  p.  577,  Mar.  2021,  doi: 10.3390/plants10030577.
26 Z.  Wang et  al. ,  “The  degradation  and  antioxidant  capacity  of  anthocyanins  from eggplant  peels  in  the  context  of  complex  food  system  under  thermal  processing,” Food Biosci , vol. 59, p. 103914, Jun. 2024, doi: 10.1016/j.fbio.2024.103914.
27 R.  Mattioli,  A.  Francioso,  L.  Mosca,  and  P.  Silva,  “Anthocyanins:  A  Comprehensive Review  of  Their  Chemical  Properties  and  Health  Effects  on  Cardiovascular  and
Neurodegenerative  Diseases,” Molecules ,  vol.  25,  no.  17,  p.  3809,  Aug.  2020,  doi: 10.3390/molecules25173809.
28 B.  Enaru,  G.  Drețcanu,  T.  D.  Pop,  A.  Stǎnilǎ,  and  Z.  Diaconeasa,  “Anthocyanins: Factors  Affecting  Their  Stability  and  Degradation,” Antioxidants ,  vol.  10,  no.  12,  p. 1967, Dec. 2021, doi: 10.3390/antiox10121967.
29 T. Taghavi,  H.  Patel,  and  R.  Rafie,  “Extraction  Solvents  Affect  Anthocyanin  Yield, Color,  and  Profile  of  Strawberries,” Plants ,  vol.  12,  no.  9,  p.  1833,  Apr.  2023,  doi: 10.3390/plants12091833.
30 Netravati,  S.  Gomez,  B.  Pathrose,  M.  Joseph,  M.  Shynu,  and  B.  Kuruvila, “Comparison  of  extraction  methods  on  anthocyanin  pigment  attributes  from mangosteen  (Garcinia  mangostana  L.)  fruit  rind  as  potential  food  colourant,” Food Chemistry Advances , vol. 4, p. 100559, Jun. 2024, doi: 10.1016/j.focha.2023.100559.
31 B.  Bhushan et  al. ,  “FTIR  spectra,  antioxidant  capacity  and  degradation  kinetics  of maize  anthocyanin  extract  under  variable  process  conditions,” Applied  Food Research , vol. 3, no. 1, p. 100282, Jun. 2023, doi: 10.1016/j.afres.2023.100282.
32 L. Yang, K.-S. Wen, X. Ruan, Y.- X. Zhao, F. Wei, and Q. Wang, “Response of Plant Secondary  Metabolites to Environmental  Factors,” Molecules ,  vol.  23,  no.  4,  p.  762, Mar. 2018, doi: 10.3390/molecules23040762.
33 A.  Raza et  al. ,  “Impact  of  Climate  Change  on  Crops  Adapt ation  and  Strategies  to Tackle  Its  Outcome:  A  Review,” Plants ,  vol.  8,  no.  2,  p.  34,  Jan.  2019,  doi: 10.3390/plants8020034.
34 K. Xiao et al. , “Fine Mapping of Candidate Gene Controlling Anthocyanin Biosynthesis for Purple Peel in Solanum melongena L.,” Int J Mol Sci , vol. 25, no. 10, p. 5241, May 2024, doi: 10.3390/ijms25105241.
35 E.  Sulistyorini,  Kirana  Nugrahayu  Lizansari,  and  Kholilah  Febriyanti,  “The  Role  of Anthocyanin Substances from Dragon Fruit Skin Extract in Formalin Content Testing in  White Tofu,” SEAS  (Sustainable  Environment  Agricultural  Science) ,  vol.  6,  no.  1, pp. 10 – 15, Apr. 2022, doi: 10.22225/seas.6.1.4757.10-15.
36 E.  Sulistyorini,  Kirana  Nugrahayu  Lizansari,  and  Kholilah  Febriyanti,  “The  Role  of Anthocyanin Substances from Dragon  Fruit Skin Extract in Formalin Content Testing in White  Tofu,” SEAS  (Sustainable  Environment  Agricultural  Science) ,  vol.  6,  no.  1, pp. 10 – 15, Apr. 2022, doi: 10.22225/seas.6.1.4757.10-15.