ISSN: 2579-7417
https:jurnal.agrosainta.id/index.php/ags
EISSN: 2774-4922
DOI: https://doi.org/10.51589/ags.v5i2.96
Uji  Antagonis  Jamur  Endofit  Terhadap  Patogen Sclerotium  rolfsii Sacc.  Penyebab  Penyakit  Busuk  Batang  Pada  Tanaman  Kacang Tanah
Antagonist Test of Endophytic Fungus Against Pathogen Sclerotium rolfsii Sacc. Causes of Stem Rot Disease on Peanut Plants
Siska Adielfina a,1,* , Liliek Sulistyowati a,2 , Luqman Qurata Aini, a,3 , Alfi Inayati b,4.
a Program Studi Patologi Tumbuhan, Fakultas Pertanian, Universitas Brawijaya, Jalan Veteran  No. 1, Malang, 65145
b Balai Penelitian Tanaman Aneka Kacang dan Umbi, Jalan Raya Kendalpayak No. 66, Malang, 65162
1 siskadielfina@gmail.com *; 2 lsw.fp@ub.ac.id ; 3 luqman.fp@ub.ac.id; 4 alfiinayati2@gmail.com * corresponding author
I N F O A R T I K E L A B S T R A C T / A B S T R A K
Sejarah Artikel
Dikirim: 13 Juli 2022
Diterima: 14 Juli 2022 Terbit: 24 Oktober 2022 Penyakit  penting  pada  pertanaman  kacang  tanah  adalah  penyakit  busuk  batang  yang disebabkan oleh Sclerotium rolfsii. S. rolfsii merupakan patogen tular tanah yang dapat menurunkan hasil panen dan penurunan hasil polong. Pengendalian untuk patogen tular tanah pada umumnya yaitu  dengan  penggunaan  fungisida  kimia,  namun  penggunaan  bahan-bahan  kimia  pada pengendalian penyakit tanaman mulai dihindari karena berdampak negatif dan dapat merusak lingkungan. Pengendalian menggunakan agens hayati seperti jamur endofit yang terdapat pada jaringan  tanaman  merupakan  salah  satu  alternatif  untuk  pengendalian  penyakit  pada  tanaman kacang tanah. Penelitian ini bertujuan untuk memperoleh jamur endofit yang berpotensi sebagai jamur  antagonis  dan  mengetahui  mekanisme  antagonis  yang  dihasikan  jamur  endofit  dalam menghambat pertumbuhan jamur S. rolfsii . Metode penelitian yang digunakan adalah eksplorasi jamur endofit, isolasi jamur patogen, identifikasi jamur patogen, uji postulat Koch, uji antagonis, uji mekanisme antagonis dan analisis data. Hasil penelitian mendapatan 28 isolat jamur endofit. Jamur  endofit  dilakukan  pengujian  antagonis  dan  diperoleh  isolat Trichoderma spp  dengan persentase  penghambatan  90,24%,  pengamatan  mekanisme  antagonis  yang  terjadi  yaitu mikoparasit. Pengamatan mekanisme antagonis yang terjadi yaitu mikoparasit, ditandai dengan hifa yang mengkolonisasi hifa S. rolfsii , kerusakan hifa yaitu lisis, dan pertumbuhan hifa abnormal menjadi keriting.
A significant disease in peanut plantations is stem rot caused by Sclerotium rolfsii. S. rolfsii is a soil-borne pathogen that can reduce crop yields and decrease pod yields. Control for soil-borne pathogens, in general, is by using chemical fungicides. Using chemicals in plant disease control is avoided because they have a negative impact and can damage the environment. Biological control by utilizing biological agents found in nature, such as endophytic fungi, can be used as an alternative for disease control in peanut plants. This study aims to obtain endophytic fungi that have the potential as antagonist fungi and to determine the mechanism of antagonist produced by endophytic fungi in inhibiting the growth of S. rolfsii. The method used in this research is exploration, antagonist test, and antagonist mechanism test. Identifying pathogenic fungi, Koch's postulate test, endophytic fungal antagonist test with pathogenic fungus S. rolfsii, and data analysis. The results obtained 28 isolates of endophytic fungi. Endophytic fungi were tested for antagonists and  obtained  Trichoderma  spp  isolates  with  an  inhibition  percentage  of  90.24%.  Observation  of  the antagonist  mechanism  that  occurs  is  mycoparasites.  Observation  of  the  antagonist  mechanism  namely mycoparasites,  is  characterized  by  hyphae  that  colonize  S.  rolfsii  hyphae,  hyphae  damage  is  lysis,  and abnormal hyphae growth becomes curly.
This is an open access article under the CC – BY license.
Kata Kunci: Jamur endofit, Uji antagonis, Mekanisme antagonis, Sclerotium rolfsii. Keywords: Endophytic fungi, Antagonist test, Antagonistic mechanism, Sclerotium rolfsii.

## 1. Pendahuluan
Sclerotium rolfsii merupakan penyakit penting pada tanaman kacang tanah dan salah satu patogen tular tanah yang menyebabkan busuk batang pada tanaman kacang tanah, serangan S. rolfsii pada kacang tanah dilaporkan dapat menurunkan hasil antara 25-50%  (Dos Santos & Bettiol, 2003) dan penurunan hasil polong mencapai 60% (Kator et al ., 2015). S. rolfsii dapat menyerang seluruh bagian tanaman kacang tanah dan sulit untuk dilakukan pengendalian karena patogen ini menghasilkan sklerotia yang mampu bertahan lama dalam tanah  (Le, 2011).
Pengendalian untuk patogen tular tanah pada umumnya yaitu dengan menghilangkan bagian tanaman yang terserang  patogen,  rotasi  tanaman,  penggunaan  varietas  tahan,  dan  penggunaan  fungisida  kimia,  namun penggunaan bahan-bahan kimia pada pengendalian penyakit tanaman mulai dihindari karena berdampak negatif pada lingkungan (Purwantisari & Hastuti, 2012). Upaya yang efektif untuk mengurangi penggunaan bahan kimia dalam  pengendalian  penyakit  yaitu  dengan  pengendalian  hayati  yang  ramah  lingkungan  (Naik et  al .,  2009). Pengendalian menggunakan agens hayati seperti jamur endofit yang terdapat pada jaringan tanaman merupakan salah satu alternatif untuk pengendalian penyakit pada tanaman kacang tanah,  suatu mikroorganisme yang terdapat dalam jaringan tanaman merupakan jamur endofit (Hung & Annapurna, 2004).
Pada penelitian sebelumnya telah banyak ditemukan manfaat dari jamur endofit dalam mengendalikan penyakit tumbuhan dan mekanisme yang dihasilkan jamur endofit untuk menekan penyakit.  (Le, 2011)   melaporkan jamur endofit yang diisolasi pada kacang tanah dan berhasil dalam menekan penyakit S. rolfsii yaitu Gliocladium roseum , Gliocladium  virens , Gliocladium sp, Glomus  caledonium , Glomus  fasciculatum , Gigaspora  margarita ,  dan Trichoderma harzianum . Trichoderma merupakan jamur endofit yang bersifat antagonis untuk pengendalian patogen (Gazis & Chaverri, 2010). Penelitian Madi et al., (1997) melaporkan jamur Taleromyces flavus diteliti aktivitas beberapa enzim  kitinase,  glukanase  dan  selulase  namun  hanya  aktivitas  kitinase  yang  berkolerasi  positif  dengan penghambatan busuk batang pada buncis karena kitinase mampu mendegradasi ujung hifa S. rolfsii. Trichoderma spp merupakan jamur endofit yang dapat dikembangkan sebagai pengendalian secara biologi karena telah banyak dilaporkan keberhasilannya untuk mengendalikan patogen tular tanah.
Berdasarkan  penjelasan  diatas,  maka  perlu  dilakukan  penelitian  ini  untuk  mengetahui  kemampuan  jamur endofit yang menjadi agen antagonis terhadap jamur patogen S. rolfsii dan bagaimana mekanisme antagonis yang terjadi dari hasil uji antagonis sehingga dapat menghambat pertumbuhan jamur patogen S. rolfsii.

## 2. Metodologi
Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan, Balai Penelitian Tanaman Aneka Kacang dan Umbi (Balitkabi) dan Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian  Universitas  Brawijaya  pada  bulan  Maret  2021  sampai  November  2021.  Metode  penelitian  yang digunakan adalah eksplorasi jamur endofit, isolasi jamur patogen, identifikasi jamur patogen, uji postulat Koch, uji antagonis, uji mekanisme antagonis, dan analisis data.
Patogen S. rolfsii diisolasi dari bagian batang tanaman kacang tanah yang terinfeksi, dengan metode hyphal tip  dan  ditanam  pada  media  PDA  kemudian  disimpan  pada  suhu  4°C.  Isolat  yang  sudah  didapatkan,  akan dilakukan identifikasi makroskopis dan mikroskopis.
Jamur endofit yang akan di eksplorasi yaitu pada bagian daun, batang, dan akar tanaman kacang tanah yang sehat. Metode yang digunakan yaitu metode yaitu dengan pemetaan satu lahan pada garis diagonal dan diperoleh 5 tanaman dalam satu petak lahan dan masing-masing tanaman diambil bagian daun, batang, dan akar.
Metode isolasi dilakukan dengan mengacu pada penelitian Kamel et al. , (2020). Sampel tanaman disterilkan dengan alkohol dan aquades. Sampel selanjutnya dikeringkan pada tisu steril dan dilakukan penanaman pada media PDA. Isolat dalam PDA diinkubasi hingga terdapat hifa yang tumbuh lalu dilakukan pemurnian. Pemurnian  dilakukan  dengan  menggunakan  teknik  hyphal  tip.  Hasil  isolasi  pada  media  PDA  dilihat pertumbuhannya, hifa yang tumbuh diambil dan dipindahkan pada media PDA yang baru untuk memperoleh isolat jamur endofit yang murni.
Isolat  jamur  yang  sudah  murni  selanjutnya  dilakukan  pengamatan  secara  makroskopis  dan  mikroskopis. Pengamatan secara makroskopis mengacu pada pengamatan bentuk, warna, dan arah koloni. Pada pengamatan mikroskopis melihat hifa, bentuk hifa dan bentuk konidia, juga warna hifa. Hasil pengamatan diidentifikasi dengan panduan buku identifikasi jamur Illustrated Genere of Imperfect Fungi Fourthed. Uji postulate Koch mengacu pada metode  Kamel et al ., (2020) yaitu menyiapkan inokulum S. rolfsii , infestasi inokulum  pada  tanah  steril,  dan  selanjutnya  penyemaian  benih  kacang  tanah.  Uji  dilakukan  dengan  cara menumbuhkan patogen pada botol berisi media campuran sekam dan dedak steril dan dicampur aquades steril hingga media menjadi lembab. Miselium S. rolfsii diambil sebanyak 3 kali menggunakan cork borer diameter 1.5 cm dan dimasukan pada botol yang sudah berisi media steril, diinkubasi pada suhu ruang selama 7 hari hingga
jamur sudah berkolonisasi dan inokulum siap digunakan. Selanjutnya inokulum S. rolfsii dicampur tanah steril pada polybag kecil, diberikan air agar tanah menjadi lembab dan hari berikutnya biji kacang ditanam pada polybag. Isolat S. rolfsii diamati patogenesitasnya terhadap tanaman kacang tanah. Pengamatan dilakukan terhadap gejala penyakit yang muncul serupa pada tanaman kacang tanah yang memiliki morfologi makroskopis dan mikroskopis yang sama dengan patogen yang diinokulasi. Pengamatan penyakit dilakukan setiap 3 kali sehari selama 30 hari dan dilakuan perbandingan dengan tanaman kontrol yang tidak diinokulasi oleh S. rolfsii . Uji antagonis antara  jamur  endofit dengan  jamur S. rolfsii dengan  metode  oposisi langsung   Kamel et  al ., (2020). Miselium keduanya (jamur endofit dan jamur patogen) dengan diameter 5 mm, ditanam pada media PDA dengan jarak 3 cm. Terdapat 4 titik untuk jamur endofit dan jamur patogen satu titik pada bagian tengah. Satu media PDA hanya ditanam jamur patogen untuk perlakuan kontrol. Perlakuan uji antagonis terdapat 28 perlakuan jamur endofit dengan jamur patogen dan 1 perlakuan kontrol dengan masing-masing dilakukan 3 kali ulangan. Perhitungan persentase penghambatan dilakukan hingga 7 HSI dan persentase penghambatan dihitung berdasarkan rumus:
H = K-P  X 100 % K Keterangan : H : Persentase hambatan (%) K               : Diameter miselium patogen kontrol (cm) P : Diameter miselium patogen dengan antagonis jamur endofit (cm)
Pengamatan secara mikroskopis mengacu pada metode penelitian  Kamel et al ., (2020) dengan menggunakan mikroskop. Tahapan yang pertama yaitu menyiapkan kaca preparat yang sudah diteteskan aquades, kemudian mengambil hifa jamur hasil uji antagonis dengan jarum ose dan meletakkannya di atas kaca preparat dan ditutup dengan gelas penutup. Pengamatan dilakukan pada mikroskop perbesaran 400x.
Data pengamatan yang diperoleh dilakukan analisis dengan menggunakan Rancangan Acak Lengkap, kemudian apabila hasilnya berbeda nyata pada setiap perlakuan maka dilakukan uji lanjut yaitu menggunakan uji Duncan dengan taraf kesalahan 5%.

## 3. Hasil dan Pembahasan
3.1. Hasil Isolasi dan Identifikasi S. rolfsii
S.  rolfsii berhasil  diisolasi  dari  batang  tanaman  kacang tanah  yang  bergejala. Jamur S. rolfsii dilakukan pengamatan secara makroskopis, mikroskopis, dan molekuler. Pengamatan makroskopis jamur S. rolfsii memiliki ciri-ciri  yaitu  koloni  berwarna  putih,  tekstur  koloni  halus  dan  pola  sebaran  jamur  yaitu  menyebar  rata, pertumbuhan koloni tergolong cepat pada hari ke empat sampai lima sudah memenuhi cawan petri (Gambar 1a). Pada isolat berumur 14 HSI, mulai muncul sklerotia pada permukaan jamur (Gambar 1b). Pengamatan secara mikroskopis S. rolfsii diamati menunjukkan hifa hialin dan bercabang-cabang. Ciri khusus dari S. rolfsii terlihat adanya penghubung antar hifa ( clamp connection ) (Gambar 1c) dan tidak ditemukan adanya konidia pada jamur.
Gambar 1 . Koloni S. rolfsii pada media PDA. (a). umur 7 hsi, (b). umur 14 hsi saat muncul sklerotia, (c). Morfologi S. rolfsii perbesaran 40x pada mikroskop: 1. clamp conection

## 3.2. Uji Postulat Koch
Uji  postulat Koch dilakukan  dengan  tahapan  inokulasi  jamur S.  rolfsii, munculnya  gejala  dan  isolasi kembali  gejala  yang  dihasilkan  hingga  tahap  identifikasi makroskopis  dan  mikroskopis.  Pengamatan  penyakit dilakukan setiap 3 kali sehari selama 30 hari dan dilakuan perbandingan dengan tanaman kontrol yang tidak diinokulasi oleh S.rolfsii . Tanaman kontrol terlihat tumbuh dengan sangat baik tidak ada kerusakan apapun pada tanaman (Gambar 2a) . Sedangkan tanaman yang diinokulasi S.rolfsii pada 30 HSI terlihat gejala penyakit pada tanaman yaitu daun layu menguning dan tanaman mengalami klorosis (Gambar 2b), terdapat miselium jamur
a 1 a b c
disekitar permukaan tanah dan juga ada sklerotia (Gambar 2c). Pada bagian batang tanaman terlihat bahwa batang mengalami pembusukan (Gambar 2d).
Gambar 2 . Gejala S. rolfsii pada pengujian postulat Koch (a). tanaman kontrol (b). tanaman layu dan menguning (c). 1. hifa muncul disekitar akar 2. sklerotia disekitar permukaan tanaman (d). batang tanaman yang membusuk.

## 3.3. Eksplorasi Jamur Endofit
Pengambilan sample untuk eksplorasi jamur endofit dilakukan pada berbagai tempat budidaya kacang tanah. Pertama di kebun percobaan Balitkabi dengan 3 jenis varietas yang berbeda yaitu varietas Takar, Hypoma, dan Katana. Selanjutnya pada kebun percobaan Balitkabi di Kecamatan Jambe Gede Kabupaten Malang, dan pada lahan budidaya kacang tanah milik petani di Kecamatan Tawangagro Kabupaten Malang. Isolasi jamur endofit dilakukan pada bagian daun, batang dan akar tanaman kacang tanah yang tidak terserang penyakit. Dari hasil isolasi diperoleh 28 isolat, yaitu 3 isolat pada bagian daun, 7 isolat pada bagian akar, dan 18 isolat pada bagian batang.

## 3.4. Hasil Uji Antagonis Jamur Endofit terhadap S.rolfsii
Uji antagonis dilakukan pada 28 isolat jamur endofit terhadap jamur S. rolfsii dengan metode oposisi langsung pada media PDA. Pengamatan daya hambat jamur endofit terhadap S. rolfsii dilakukan pada 1 HSI hingga 7 HSI. Hasil uji antagonis dari 28 isolat jamur endofit pada 7 HSI menunjukkan kemampuan penghambatan yang berbeda. dan hanya terdapat 12 jamur yang mampu menghambat pertumbuhan jamur S. rolfsii (Tabel 2). Tabel 2 . Rerata persentase penghambatan 12 jamur endofit terhadap S. rolfsii pada 7 HSI.
Keterangan: Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada baris dan kolom yang sama menunjukkan perbedaan    yang tidak nyata berdasarkan uji Duncan taraf 5%. (*) jamur endofit dengan persentase penghambatan tertinggi.
Hasil uji antagonis didapatkan data berupa persentase penghambatan, terdapat 12 jamur endofit yang dapat menghambat pertumbuhan jamur. Jamur endofit dengan persentase penghambatan tertinggi yaitu jamur endofit  dengan  kode  isolat  EKT  3,  persentase  penghambatan  mencapai  90,74  %.  Uji  antagonis  yang  telah dilakukan pada jamur endofit dengan S. rolfii (Gambar 3a) dan dibandingkan dengan perlakuan kontrol tanpa jamur  endofit  (Gambar  3a). Pengamatan  secara  makroskopis  menunjukan  bahwa  mekanisme  antagonis  yang dihasilkan adalah kompetisi, pada 7 HSI pertumbuhan jamur S. rolfsii sudah terhambat dan koloni jamur EKT 3 sudah memenuhi cawan petri hingga tumbuh diatas permukaan koloni S. rolfsii (Gambar 3b).
No. Kode Jamur Endofit Persentase Penghambatan (%) 1. Kontrol 00.00 a   ±  0.00 2. BKH 2 24.07 b   ±  0.00 3. DKT 2 42.59 c   ±  3.20 4. BKK 1 42.59 c   ±  3.20 5. BKT 1 42.59 c   ±  3.20 6. BKG 5 46.30 c   ±  3.20 7. BKH 3 46.67 c   ±  2.23 8. EKB 3 52.22 d   ±  0.00 9. EKB 4 57.41 de ±  1.70 10. BKG 4 61.11 e   ±  2.31 11. BKT 3 70.00 f    ±  2.94 12. BKH 1 88.52 g   ±  0.64 13. EKT 3* 90.74 g   ±  0.64
a b 1 1 1 2 c d
Gambar 3 . Uji antagonis jamur endofit dan S. rolfsii 7 HSI. (a). kontrol (b). EKT 3

## 3.5. Mekanisme Antagonis antara Jamur Endofit terhadap S. rolfsii
Pengamatan  terhadap  mekanisme  antagonis  secara  mikroskopis  antara  jamur  endofit  dan S.  rolfsii dilakukan setelah uji antagonis . Mekanisme yang diamati yaitu antara jamur EKT 3 yang memiliki persentase penghambatan  tertinggi . Miselia  jamur S.  rolfsii diambil  tipis  dan  diletakan  pada  kaca  preparat  selanjutnya dilakukan pengamatan menggunakan mikroskop perbesaran 400x. Hasil pengamatan menunjukkan bahwa terjadi mikoparasit, yaitu hifa jamur EKT 3 mengkolonisasi jamur S. rolfsii dengan cara penetrasi yaitu jamur EKT 3 masuk dan melingkar ke dalam hifa S. rolfsii (Gambar 4 a,b). Hifa jamur EKT 3 juga terlihat tumbuh didalam hifa S. rolfsii (Gambar 4c). Hifa patogen mengalami lisis (Gambar 4d) dan juga pertumbuhan yang abnormal yaitu hifa menjadi keriting (Gambar 4e) jika dibandingkan dengan hifa S. rolfsii tanpa perlakuan (Gambar 4f)
S= hifa S. rolfsii, T= hifa EKT 3
Gambar 4. Mekanisme antagonis mikoparasit yang terjadi antara jamur endofit EKT 3 dan S. rolfsii, (a,b). hifa EKT 3 masuk kedalam hifa S. rolfsi dan tumbuh melingkari hifa patogen (c). hifa EKT 3 tumbuh didalam hifa S. rolfsii (d). hifa S. rolfsii mengalami lisis (e). pertumbuhan hifa S. rolfsii tidak normal (f). hifa S. rolfsii tanpa perlakuan (kontrol) .
b a a b c d e f S f d x S f d x S f d x T a b e l 2 . R e r a t a p e r s e n t a s e p e
T a b e l 2 . R e r a t a p e r s e n t a s e p e n g
T
a
b e l 2 . R e r a t a p e r s e n t 20 µm 20 µm 20 µm 20 µm 20 µm 20 µm

## 3.6. Identifikasi Jamur Endofit
Jamur endofit dengan persentase penghambatan tertinggi akan digunakan sebagai bahan pengujian lebih lanjut hingga tahap identifikasi makroskopis, mikroskopis hingga molekuler. Hasil identifikasi makroskopis yang diamati bahwa permukaan jamur berwarna hijau dan berwarna keputihan pada bagian tengah koloni, pada bagian tepinya berwarna hijau keabuan. Koloni berbentuk bulat, tepian koloni yang menyeluruh beraturan, tekstur permukaannya halus, tebal, dan rapat. Pertumbuhan jamur ini termasuk cepat karena pada hari ke empat jamur ini sudah memenuhi cawan petri dengan diameter 9 cm (Gambar 5a). Pengamatan secara mikroskopis dilakukan menggunakan mikroskop dengan perbesaran 400x. Berdasarkan hasil pengamatan mikroskopis  jamur EKT 3 memiliki hifa hialin, tegak lurus, dan konidia bundar yang bercabang seperti mahkota yang termasuk jamur genus Trichoderma spp. (Gambar 5b)
Gambar 5 . Pengamatan makroskopis dan mikroskopis jamur EKT 3 (a) koloni jamur EKT 3 pada media PDA (b). pengamatan mikroskopis dengan perbesaran 400x.
Jamur S.  rolfsii menimbulkan gejala  yang  khas  pada tanaman  inangnya.  Gejala  serangan  yang  sering terlihat yaitu tanaman layu dan terdapat adanya miselia putih dan juga sklerotia. Sklerotia dapat bertahan lama dalam tanah dan tahan terhadap keadaan tercekam. Sumartini, (2018) menyebutkan pada tanaman yang terserang S. rolfsii terdapat miselium putih dan sklerotia pada permukaan tanah tanaman.  mengungkapkan bahwa jamur S.rolfsii berkembang biak dengan sklerotia pada kondisi lingkungan yang menguntungkan. Uji postulat Koch , tanaman kacang tanah yang diinokulasikan jamur S.rolfsii mengalami gejala awal daun berwana kuning dan layu hingga    terdapat  miselia  putih  disekitar  permukaan  tanaman  dan  terdapat  sklerotia  yang  menyebar  di  atas permukaan tanah. Selanjutnya muncul gejala tanaman mengalami klorosis hingga akhirnya mati dan batangnya membusuk. Hal ini diperkuat dengan hasil penelitian Kamel et al ., (2020) patogen memproduksi sklerotia dalam jumlah banyak disekitar permukaan pada tanaman yang ditanam dalam pot, dan patogen menyebabkan kematian sebagian besar tanaman setelah 40 HSI.
Eksplorasi jamur endofit didapatkan isolat sebanyak 28 jamur endofit. Hasil uji antagonis selama 7 HSI hanya terdapat 12 jamur endofit yang dapat menghambat jamur S. rolfsii . Hasil uji antagonis dengan persentase penghambatan tertinggi yaitu pada jamur EKT 3 dengan persentase penghambatan mencapai 90.24%. Menurut Mourad et al ., (2019) pertumbuhan yang cepat dari beberapa jamur (persen penghambatan lebih besar dari 50%) menghambat pertumbuhan miselium patogen.
Pengujian  antagonis  yang  dilakukan  antara Trichoderma spp. dan S.  rolfsii. menunjukkan  mekanisme antagonis yang terjadi adalah mikoparasit, ditandai dengan tumbuhnya jamur Trichoderma spp. diatas permukaan jamur S.  rolfsii .  Hal  ini  diperkuat  dengan  pengamatan  secara  mikroskopis  yang  menunjukkan  bahwa  hifa Trichoderma spp. mengkolonisasi hifa S. rolfsii yaitu hifa masuk dan melingkar, tumbuh didalam hifa S. rolfsii dan hifa juga mengalami lisis, hifa menjadi keriting hingga mengalami pertumbuhan yang abnormal. Pada penelitian Kamel et al ., (2020) yang menyatakan bahwa pengamatan interaksi mikoparasit secara mikroskopis menghasilkan interaksi  yang  berbeda.  Interaksi  seperti  pertumbuhan  hifa  antagonis  dalam  jumlah  banyak  disamping  hifa patogen, hifa yang melilit, dan lisis hifa. Hasil yang sebanding dengan Živkovi ć et al ., (2010) juga melaporkan mekanisme mikoparasit T. harzianum terhadap Collectroticum spp yaitu hifa melingkar, masuk kedalam hifa, dan pertumbuhan  disekitar  hifa  patogen.  Pengamatan  hifa  yang  menunjukkan  bahwa  hifa  mengalami  kerusakan seperti lisis sesuai dengan pernyataan Abo-Elyousr et al ., (2014) dan Sahar Zayan et al ., (2016) bahwa Trichoderma spp. memiliki aktivitas antijamur seperti enzim lisis yang berperan sebagai perusak dinding sel jamur seperti kitinase, glukanase dan protease.
a b

## 4. Kesimpulan
Eksplorasi jamur endofit yang dilakukan dari tanaman kacang tanah yang sehat mendapatkan 28 isolat jamur endofit. Hasil uji antagonis dengan jamur S. rolfsii mendapatkan persentase penghambatan tertinggi yaitu jamur Trichoderma spp. dengan persentase penghambatan mencapai 90.24%. Mekanisme antagonis Trichoderma spp. pada S. rolfsii yaitu mikoparasit, ditandai dengan hifa yang mengkolonisasi hifa S. rolfsii pada pengujian secara in vitro dan juga hifa S. rolfsii mengalami kerusakan yaitu lisis, dan pertumbuhan hifa abnormal.

## Daftar Referensi
Abo-Elyousr,  K.  A.  M.,  Abdel-Hafez,  S.  I.  I.,  &  Abdel-Rahim,  I.  R.  (2014).  Isolation  of Trichoderma and evaluation of their antagonistic potential against Alternaria porri . Journal of Phytopathology , 162 (9), 567 – 574.
Dos Santos, I., & Bettiol, W. (2003). Effect of sewage sludge on the rot and seedling damping-off of bean plants caused by Sclerotium rolfsii . Crop Protection , 22 (9), 1093 – 1097
Gazis, R., & Chaverri, P. (2010). Diversity of fungal endophytes in leaves and stems of wild rubber trees ( Hevea brasiliensis ) in Peru. Fungal Ecology , 3 (3), 240 – 254.
Hung, P. Q., & Annapurna, K. (2004). Isolation and characterization of endophytic bacteria in soybean ( Glycine Sp .) . 101 , 92 – 101.
Kamel, S., Farag, F., Arafa, R., & Essa, T. (2020). Bio-Control Potentials of Trichoderma spp. Against Sclerotium rolfsii the Causative of Root and Crown Rot in Tomato, Common Bean and Cabbage. Egyptian Journal of Phytopathology , 48 (1), 122 – 136. Kator, L., Yula Hosea, Z., & Daniel Oche, O. (2015). Sclerotium rolfsii ; Causative organism of southern blight, stem rot, white mold and sclerotia rot disease. Scholars Research Library Annals of Biological Research , 6 (11), 78 – 89.
Le, C. N. (2011). Diversity and biological control of Sclerotium rolfsii , causal agent of stem rot of groundnut. In Diversity and  biological  control  of Sclerotium  rolfsii, causal  agent  of  stem  rot  of  groundnut. https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20123035128
Madi, L., Katan, T., Katan, J., & Henis, Y. (1997). Biological control of Sclerotium rolfsii and Verticillium dahliae by Talaromyces flavus is mediated by different mechanisms. Phytopathology , 87 (10), 1054 – 1060. Mourad,  Z.,  Sesnv,  F.,  Larbi,  U.,  &  Bouaghi,  O.  El.  (2019).  Streptomyces  griseus  LAC1  :  Biocontrole  et proprietes promotrices de la croissance des plantes . 9 , 27 – 37.
Naik, B. S., Shashikala, J., & Krishnamurthy, Y. L. (2009). Study on the diversity of endophytic communities from rice ( Oryza sativa L.) and their antagonistic activities in vitro. Microbiological Research , 164 (3), 290 – 296.
Purwantisari, S.-, & Hastuti, R. B. (2012). Isolasi dan Identifikasi Jamur Indigenous Rhizosfer Tanaman Kentang dari Lahan Pertanian Kentang Organik di Desa Pakis, Magelang. Bioma : Berkala Ilmiah Biologi , 11 (2), 45. Sahar Zayan, A. M., Ahmed, M. F., & Rashed, M. S. (2016). Evaluation of seed coating with certain bio-agents against damping-off and root rot diseases of fennel under organic farming system. Journal of Phytopathology and Pest Management , 3 (3), 11 – 23. Sumartini. (2018). Penyakit tular tanah. Jurnal Litbang Pertanian , 31 (1), 27 – 34.
Živkovi ć , S., Stojanovi ć , S., Ivanovi ć , Ž., Gavrilovi ć , V., Popovi ć , T., & Balaž, J. (2010).  Serbian Source Colletotrichum acutatum Colletotrichum gloeosporioides . Archives of Biological Sciences , 62 (3), 611 – 623.
[Halaman ini sengaja dikosongkan]