J. Kartika Kimia , November 2023, 6, (2), 116-122 Journal homepage : http://jkk.unjani.ac.id/index.php/jkk P-ISSN: 2655-1322     E-ISSN: 2655-0938

## Komposisi Proksimat dari Gracilia Sp, Sargassum Sp, dan Ulva Lactuca di Pantai Sayang Heulang, Garut Selatan, Jawa Barat, Indonesia

## Proximate Composition in Gracilia sp, Sargassum sp, and Ulva Lactuca at Sayang Heulang Coast, South Garut, West Java Indonesia
Handajaya Rusli * , Sri Dewi Lestari, Muhammad Iqbal, dan Rusnadi Kelompok Keahlian Kimia Analitik, Institut Teknologi Bandung, Indonesia *E-mail: handajaya@itb.ac.id
DOI: https://doi.org/10.26874/jkk.v6i2.229
Received : 6 Nov 2023, Revised : 2 Jan 2024, Accepted : 2 Jan 2024, O nline : 5 Jan 2024

## Abstrak
Karbohidrat, protein, lemak, dan mineral adalah kandungan utama rumput laut selain air. Kandungan utama ini dapat berbeda-beda dipengaruhi oleh kondisi lingkungan dan jenis rumput laut. Gracilaria sp , Sargassum  sp ,  dan Ulva  lactuca banyak  tumbuh  dan  telah  dimanfaatkan  di  pantai  Sayang  Heulang, Garut Selatan, Jawa Barat, Indonesia. Sayangnya, tidak ditemukan informasi kandungan utama rumput laut tersebut sebagai salah satu indikator kualitas rumput laut.  Penelitian ini bertujuan untuk melakukan analisa  proksimat  terhadap  ketiga  rumput  laut  tersebut  yang  secara  berurutan  mewakili  rumput  laut coklat,  rumput  laut  merah,  dan  rumput  laut  hijau.  Analisa  karbohidrat  total  dilakukan  menggunakan metode Luff Schoorl dan didapatkan kadar 11,2 %(b/b); 25,3 % (b/b); dan 20,4 %(b/b) untuk berturut- turut Gracilaria  sp , Sargassum  sp ,  dan U.  lactuca .  Penentuan  kadar  protein  total  dilakukan menggunakan metode Kjeldahl-Nessler memberikan hasil 6,5 %(b/b) untuk Gracilaria sp , 7,8 %(b/b) untuk Sargassum sp , dan 8,7 %(b/b) untuk U. lactuca . Ekstraksi menggunakan Soxhlet digunakan untuk penentuan kandungan  lemak  dan  didapatkan  hasil  0,3  %(b/b)  untuk Gracilaria  sp ,  1,6  %(b/b)  untuk Sargassum  sp ,  dan  1,1  %(b/b)  untuk U.  lactuca .  Penelitian  ini  juga  menunjukkan Gracilaria  sp , Sargassum sp , dan U. lactuca mengandung berturut-turut 26,9 %(b/b); 23,6 %(b/b); dan 32,5 %(b/b) mineral.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  perbedaan  jenis  rumput  laut  memiliki  kandungan  bahan  kimia yang berbeda.
Kata kunci: Analisa proksimat , Gracilaria sp, Sargassum sp, Ulva lactuca

## Abstract
Carbohydrate protein, fat, and minerals are the main ingredients of seaweed besides water. These main contents  can  vary  depending  on  environmental  conditions  and  the  type  of  seaweed.  Gracilaria  sp, Sargassum  sp, and  Ulva  lactuca  grow  widely  and  have  been  used  on  Sayang  Heulang  beach,  South Garut, West Java,  Indonesia.  Unfortunately,  no  information  was  found  for  its main  content  that  can indicate the seaweed quality. This research aims to conduct a proximate analysis of the three seaweeds, representing  brown  seaweed,  red  seaweed,  and  green  seaweed,  respectively.  Carbohydrate  total analysis was done  using  Luff  Schoorl  method  and  gave  11.2  %w/w,  25.3  %w/w,  and  20.4  %w/w  for Gracilaria  sp,  Sargassum  sp,  and  U.  lactuca,  respectively.  Determination  of  total  protein  using  the Kjeldahl-Nessler method gives 6.5 %w/w for Gracilaria sp, 7.8 %w/w for Sargassum sp, and 8.7 %w/w for U. lactuca. The methods for fat analysis are Soxhlet extraction, which gives 0.3 %w/w for Gracilaria sp, 1.6 %w/w  for  Sargassum  sp,  and  1.1  %w/w  for  U.lactuca.  The  study  also showed  Gracilaria  sp, Sargassum  sp,  and  U.  lactuca  contain  26.9  %w/w,  23.6  %w/w,  and  32.5  %w/w  mineral  content,
respectively.  These  results  indicate  that  different  types  of  seaweed  provide  different  chemical compositions.

## Keywords: Gracilaria sp, Proximate analysis, Sargassum sp, Ulva lactuca

## 1 Pendahuluan
Data  dari  Kementerian  Kelautan  dan Perikanan,  Republik  Indonesia  menyatakan bahwa Indonesia memiliki garis pantai mencapai 108.000  km  dan  luas  perairan  laut  mencapai 6.400.000 km 2 [1]. Hal ini memungkinkan aneka biota  laut  seperti  ikan,  udang,  dan  rumput  laut untuk  dapat  berkembang  biak  dengan  baik  di perairan  Indonesia.  Berbagai  jenis  rumput  laut seperti rumput laut merah, rumput laut hijau, dan rumput  laut  coklat  dapat  tumbuh  dengan  baik  di Indonesia [2,3].
Salah satu sentra utama budidaya rumput laut di  Indonesia  adalah  provinsi  Jawa  Barat.  Pantai Sayang Heulang, Garut Selatan merupakan bagian dari  provinsi  Jawa  Barat  yang  memiliki  potensi untuk menjadi salah satu sentra budidaya rumput laut.  Saat  ini  rumput  laut  telah  tumbuh  secara alami  dan  dimanfaatkan  dalam  skala  kecil  oleh penduduk  sekitar.  Pemanfaatan  ini  tidak  diiringi dengan  pengetahuan  kualitas  rumput  laut  yang digunakan.
Salah  satu  pengujian  yang  umum  dilakukan adalah  analisa  proksimat.  Pada  analisa  ini dilakukan  penentuan  kadar  karbohidrat,  protein, lemak,  dan  mineral  [4,5].  Komposisi  ini  sangat tergantung  kepada  jenis  dan  daerah  tumbuh  dari rumput  laut  tersebut.  Survei  yang  dilakukan menunjukkan  jenis  rumput  laut  utama  yang tumbuh  di  pantai  Sayang  Heulang  adalah Gracilaria sp , Sargassum sp , dan Ulva lactuca . Berdasarkan  penjelasan  di  atas,  maka  perlu dilakukan  analisa  proksimat  terhadap  tiga  jenis rumput  laut  utama  di  pantai  Sayang  Heulang untuk  menjadi  salah  satu  parameter  kualitas rumput  laut.  Pada  penelitian  ini  dilaporkan  hasil analisa  proksimat  berupa  kandungan  total karbohidrat,  protein,  lemak,  dan  mineral  untuk ketiga jenis rumput laut di atas. Analisa ini dapat menjadi  dasar  pemanfaatan  rumput  laut  ke depannya.

## 2 Metode Penelitian
Penelitian  ini  dilakukan  di  Laboratorium Kimia  Analitik,  Institut  Teknologi  Bandung. Sampel  rumput  laut  dipanen  di  pantai  Sayang Heulang,  Garut  Selatan,  Jawa  Barat,  Indonesia. Peralatan yang digunakan dalam penelitian adalah peralatan gelas standar, set Soxhlet,
spektrofotometer  Agilent  HP  8453,  neraca analitik, oven, dan tanur.
Bahan  kimia  yang  digunakan  adalah  asam sulfat  (H 2 SO 4 ),  natrium  hidroksida  (NaOH), tembaga sulfat pentahidrat (CuSO 4 .5H 2 O), natrium karbonat (Na 2 CO 3 ), dietileter, asam sitrat monohidrat  (C 6 H 8 O 7 .H 2 O),  kalium  iodida  (KI), indikator  kanji,  asam  klorida  (HCl),  asam  asetat (HCH 3 COO), natrium tiosulfat (Na 2 S 2 O 3 ), kalium sulfat  (K 2 SO 4 ),  ammonium  klorida  (NH 4 Cl), merkuri (II) iodida (HgI 2 ), air demineral. Seluruh bahan yang digunakan adalah kualitas analitis.

## 2.1 Penyiapan sampel rumput laut
Hasil  panen  sampel  rumput  laut Gracilaria sp , Sargassum  sp ,  dan U.  lactuca dibilas dengan air  keran  untuk  membersihkan  rumput  laut  dari sisa garam dan pengotor yang menempel. Rumput laut  kemudian  dikeringkan  menggunakan  sinar matahari.  Pengeringan  lebih  lanjut  dilakukan menggunakan  oven  pada  temperatur  100 o C selama 1 jam. Sampel kemudian ditumbuk hingga halus.  Analisa  lebih  lanjut  menggunakan  sampel yang telah dihaluskan ini.

## 2.2 Penentuan total karbohidrat
Penentuan  karbohidrat  dilakukan  dengan menggunakan  metode  titrasi  Luff-Schoorl  sesuai SNI 01-2891-1992 yang dimodifikasi [6]. Reagen Luff-Schoorl disiapkan dengan melarutkan 142,8 gram Na 2 CO 3 dalam 300 ml air demineral. Larutan kemudian  dicampurkan  dengan  larutan  50  gram C 6 H 8 O 7 .H 2 O  dalam  50  mL  air  demineral. Campuran  kemudian  diaduk  hingga  tercampur sempurna.  Larutan  25  gram  CuSO 4 .5H 2 O  dalam 100 mL air demineral kemudian ditambahkan dan ditepatkan  menjadi  1  liter  untuk  mendapatkan larutan Luff-Schoorl.
Sebanyak  5,000  gram  sampel  kering ditimbang  tepat,  kemudian  dilarutkan  ke  dalam 200  mL  larutan  HCl  3%.  Campuran  kemudian dipanaskan pada temperatur 70 o C di atas pemanas listrik  selama  10  menit.  Larutan  yang  dihasilkan didinginkan  hingga  temperatur  ruang  kemudian ditambahkan  3  tetes  asam  asetat  3%  dan  20  mL larutan NaOH 30%. Larutan kemudian disaring ke
dalam labu ukur 500 mL dan ditepatkan dengan air demineral untuk mendapatkan larutan sampel.
Sebanyak 10 mL larutan sampel direaksikan dengan  25  mL  larutan  Luff  Schoorl  dan ditambahkan  15  mL  air  demineral.  Larutan dipanaskan pada temperatur 70 o C di atas pemanas listrik  selama  10  menit.  Setelah  larutan  dingin, ditambahkan  15  mL  larutan  KI  20%  dan  25  mL larutan  H 2 SO 4 25%  secara  perlahan.  Titrasi dilakukan  menggunakan  larutan  Na 2 S 2 O 3 0,1  N dan indikator kanji 1%. Perhitungan didasari dari konversi  gula  inversi  menggunakan  tabel  Luff Schoorl dan seluruh karbohidrat di dalam sampel diasumsikan sebagai glukosa.

## 2.3 Penentuan total protein
Penentuan  kadar  protein  dilakukan  dengan menggunakan  metode  Kjeldahl-Nessler  [7]  yang dipadukan  dengan  spektrofotometer  UV-Vis Agilent 8453. Sebanyak 0,200 gram sampel kering ditimbang  secara  tepat  menggunakan  neraca analitik dicampurkan dengan 7 gram K 2 SO 4 dan 1 gram CuSO 4 .5H 2 O dalam labu Kjeldahl 100 mL. Sebanyak  10  mL  H 2 SO 4 pekat  kemudian ditambahkan, larutan kemudian dibiarkan semalaman. Larutan kemudian dipanaskan menggunakan  pemanas  hingga  warna  larutan menjadi  bening.  Larutan  kemudian  dipindahkan ke labu takar 100 mL, ditambahkan dengan 1 mL larutan  NaOH  2M  dan  1  mL  pereaksi  Nessler sebelum ditepatkan dalam labu takar 100 mL.
Pereaksi Nessler untuk spektrometri UV-Vis dibuat dengan cara melarutkan 100 gram HgI 2 dan 70 gram KI ke dalam larutan 160 gram NaOH di dalam  500  mL  air.  Larutan  yang  terbentuk kemudian  ditepatkan  dalam  labu  takar  1  L. Pengukuran dilakukan dengan metode standar luar pada  panjang  gelombang  480  nm.  Setiap  larutan standar  nitrogen  dicampurkan  dengan  1  mL larutan  NaOH  2M  dan  1  mL  pereaksi  Nessler sebelum  ditepatkan  dalam  labu  takar  100  mL. Perhitungan  dilakukan  dengan  menggunakan faktor  konversi  6,25  untuk  setiap  gram  massa nitrogen sesuai rekomendasi dari FAO [8].

## 2.4 Penentuan total lemak
Penentuan  lemak  dilakukan  dengan  metode Soxhlet.  Sebanyak  2,000  gram  sampel  kering ditimbang  secara  tepat  di  dalam  cawan  porselen menggunakan  neraca  analitik.  Sampel  kemudian direfluks sebanyak 10 siklus menggunakan pelarut dietil eter. Larutan kemudian dipindahkan ke gelas
kimia  yang  telah  diketahui  massanya.  Pelarut dietil  eter  diuapkan  menggunakan  penangas  air hingga  didapatkan  larutan  pekat.    Proses dilanjutkan  dengan  menggunakan  oven  pada temperatur  50 o C  selama  1  jam.  Perhitungan dilakukan berdasarkan jumlah residu yang tersisa dari hasil penguapan pelarut dietil eter.

## 2.5 Penentuan total mineral
Penentuan total mineral dilakukan dengan metode pengabuan.  Sebanyak  3,000  gram  sampel  kering ditimbang  secara  tepat  di  dalam  cawan  porselen menggunakan  neraca  analitik.  Sampel  kemudian dimasukkan  ke  dalam  tanur  dengan  temperatur 550 o C  selama  2  jam.  Proses  pemanasan, pendinginan,  dan  penimbangan  dilakukan  terus menerus  hingga  didapatkan  massa  konstan. Perhitungan  dilakukan  dengan  mengasumsikan seluruh  abu  yang  tersisa  di  dalam  cawan  adalah sebagai mineral.

## 3 Hasil dan Diskusi
Sampel rumput laut yang dianalisis merupakan jenis rumput laut yang mewakili setiap filum. Gracilaria sp mewakili rumput laut merah, Sargassum sp mewakili rumput laut coklat, dan U. lactuca mewakili rumput laut hijau. Setiap sampel diambil  dari  perairan  yang  sama  yaitu  pantai Sayang  Heulang,  Garut  Selatan,  Jawa  Barat, Indonesia. Rumput laut yang segar memiliki kadar air  yang  tinggi  dan  selama  proses  pengeringan sebagian besar air akan menguap.
Gambar 1. Rumput laut sebelum pengeringan (kiri) dan setelah pengeringan (kanan) untuk Gracilaria sp (A,B); U. lactuca (C,D); Sargassum sp (E,F)
Pengeringan  dilakukan  di  sekitar  lokasi pengambilan sampel memanfaatkan sinar
matahari  selama  3  hari  untuk  mencapai pengeringan  yang  cukup.  Pengeringan  pada sampel  rumput  laut  menyebabkan  perubahan secara  fisik  pada  rumput  laut  dari  kondisi  segar menjadi kering Gambar 1.  Perubahan yang paling mencolok terlihat pada U. lactuca yaitu perubahan warna dan pengkerutan yang lebih tinggi. Hal ini menandakan kadar airnya paling tinggi dibandingkan spesies lainnya.
Rumput  laut  dan  tumbuhan  pada  umumnya menyimpan  cadangan  makanan  dalam  bentuk karbohidrat terutama  polisakarida  seperti  alginat, karagenan,  agarosa,  xilan,  dan  ulvan.  Pada penelitian  ini  analisa  total  karbohidrat  dilakukan menggunakan  metode  Luff  Schoorl.  Metode  ini didahului oleh proses hidrolisis polisakarida yang terdapat  di  rumput  laut  pada  suasana  asam menghasilkan  sakarida  dengan  rantai  lebih pendek.  Sakarida  yang  bersifat  sebagai  gula pereduksi  akan  bereaksi  lebih  lanjut  dengan  ion Cu(II)  berlebih  yang  terdapat  dalam  reagen  Luff Schoorl. Kelebihan ion Cu(II) kemudian ditentukan menggunakan titrasi iodometri.
Reaksi antara sakarida dan ion Cu(II) sangat tergantung  kepada  jenis  sakarida  yang  bereaksi seperti  panjang  sakarida,  golongan  sakarida,  dan sifat reduksi sakarida. Di lain sisi, karbohidrat di bahan alam tersusun  dari  berbagai  jenis sakarida sehingga suatu tabel korelasi yang berlaku umum untuk  seluruh  jenis  karbohidrat  diperlukan.  Pada penelitian  ini  tabel  yang  digunakan  dikeluarkan oleh BSN. Tabel 1 menunjukkan nilai karbohidrat untuk sampel yang telah dikeringkan. Berdasarkan data yang diperoleh, Sargassum sp memiliki kadar karbohidrat tertinggi.
Tabel 1. Kadar karbohidrat total Gracilaria sp, U. lactuca, dan Sargassum sp
Rumput laut Karbohidrat total (% b/b) Gracilaria sp 11,2 U. lactuca 20,4 Sargassum sp 25,3
Protein  merupakan  kandungan  senyawa organik  terbanyak  kedua  di  dalam  rumput    laut. Pada penelitian ini metode Kjeldahl dipilih untuk mendestruksi  nitrogen  organik  di  dalam  rumput laut  menjadi  ion  ammonium.  Pada  tahap  ini seluruh senyawa organik akan direaksikan dengan H 2 SO 4 pekat  dengan  pemanasan  dan  bantuan katalis  CuSO 4 .  Ion  ammonium  yang  terbentuk
kemudian  direaksikan  dengan  pereaksi  Nessler pada  suasana  basa  menghasilkan  senyawa berwarna  jingga  yang  intensitas  warnanya sebanding  dengan  konsentrasi  ammonium  di dalam larutan.
Protein merupakan polimer dari asam amino dengan  struktur  yang  beraneka  ragam.  Kadar nitrogen  di  tiap  asam  amino  beragam  tergantung strukturnya,  sehingga  akan  menghasilkan  protein dengan  kandungan  yang  beragam  pula.  Untuk menyelesaikan permasalahan ini, maka diperlukan suatu faktor konversi umum yang dapat mewakili perbandingan  protein  terhadap  nitrogen.  Pada penelitian ini digunakan nilai 6,25 sesuai dengan rekomendasi  FAO.  Tabel  2  menunjukkan  bahwa U. lactuca memiliki kandungan protein tertinggi.
Tabel 2. Kadar protein total Gracilaria sp, U. lactuca, dan Sargassum sp
Rumput laut Protein total (% b/b) Gracilaria sp 6,5 U. lactuca 8,7 Sargassum sp 7,8
Rumput  laut  tergolong  bahan  alam  yang memiliki  kadar  lemak  yang  rendah.  Pada penelitian  ini  analisis  kadar  lemak  total menggunakan  metode  Soxhlet.  Pelarut  yang digunakan  dalam  analisis  ini  yaitu  pelarut  eter yang  memiliki  kepolaran  lebih  rendah  atau  bisa dikategorikan  termasuk  pelarut  nonpolar.  Secara umum rumput laut tersusun oleh poli asam lemak tak  jenuh  (PUFA)  dan  sebagian  kecil  senyawa trigliserida  [9].  Kedua  bentuk  lemak  ini diharapkan akan terekstrak sempurna menggunakan  pelarut  eter.  Eter  dipilih  karena mudah untuk diuapkan, sehingga penentuan kadar lemak dapat dilakukan secara gravimetri.
Tabel 3. Kadar lemak total Gracilaria sp, U. lactuca, dan Sargassum sp Rumput laut Lemak total (% b/b) Gracilaria sp 0,3 U. lactuca 1,1 Sargassum sp 1,6
Tabel  3  menunjukkan  kadar  lemak  dalam rumput  laut  kering. Gracilaria  sp memiliki  nilai yang  jauh  lebih  rendah.  Nilai  ini  sesuai  dengan penelitian  yang  dilakukan  sebelumnya  yang mendapatkan  kesimpulan  bahwa  rumput  laut
merah  memiliki  kadar  lemak  yang  lebih  rendah dibandingkan  rumput  laut  hijau  dan  rumput  laut coklat  [10].  Pada  proses  ekstraksi  lemak,  tidak hanya didapatkan asam lemak ataupun triasilgliserida tetapi juga pigmen yang dibuktikan oleh perubahan warna hasil ekstraksi seperti yang ditunjukkan  oleh  Gambar  2.  Pigmen  yang  ada terbagi menjadi 3 grup yaitu klorofil, karetonoid, dan ficobiliprotein [11].
Lokasi  tumbuh  rumput  laut  yang  kaya  akan mineral  akan  mempengaruhi  kandungan  mineral di  dalam  rumput  laut.  Kandungan  mineral  di dalam rumput laut kering yang diambil dari pantai Sayang  Heulang  dapat  dilihat  pada  Tabel  4. Sargassum  sp ditemukan  memiliki  nilai  mineral tertinggi  dibandingkan  dengan  dua  jenis  rumput laut  lainnya.  Mineral  yang  terkandung  di  dalam rumput  laut  dapat  berupa  logam  alkali,  alkali tanah, transisi, dan logam berat tergantung kondisi perairan. Oleh  karena  itu  sering  kali  rumput  laut dijadikan indikator  tingkat  pencemaran  logam  di suatu  perairan  ataupun  dapat  digunakan  sebagai bahan bioremediasi [12–14].
Gambar 2. Hasil ekstraksi lemak rumput laut (kiri- kanan: Gracilaria sp, U. lactuca, Sargassum sp )
Tabel 4. Kadar mineral total Gracilaria sp, U. lactuca, dan Sargassum sp Rumput laut Mineral total (% b/b) Gracilaria sp 26,9 U. lactuca 23,6 Sargassum sp 32,5 Bila dijumlahkan total dari keempat komponen  yang  dianalisis  tidak  mencapai  100% dengan  maksimal  hanya  55%.  Hal  ini  dapat disebabkan oleh beberapa faktor. Pertama adalah keterbatasan  metode  analisa,  sebagai  contoh metode penentuan karbohidrat total yang terbatas untuk  jenis  gula  pereduksi  sehingga  gula  non pereduksi tidak dapat diukur. Kedua adalah masih terdapat  kandungan  air  di  dalam  sampel. Sampel hanya  dikeringkan  menggunakan  sinar  matahari sehingga  sangat  dimungkinkan  masih  terdapat kandungan  air  pada  sampel.  Ketiga  adalah terdapat  senyawa-senyawa  lain  yang  tidak terdeteksi dengan metode digunakan seperti DNA dan anion-anion (F, Cl, sulfat, nitrat, dll).
Beberapa  penelitian  menggunakan  jenis rumput  laut  yang  sama  di  berbagai  perairan Indonesia  lima  tahun  terakhir  dirangkum  pada Tabel  5.  Nilai-nilai  yang  didapat  di  tiap  daerah sangat  jauh  berbeda  dan  tidak  dapat  ditemukan kecenderungan  yang  sama.  Hal  ini  menandakan ketidaksamaan  metode  analisis  yang  dilakukan. Walaupun  sebagian  besar  peneliti  menggunakan metode  yang  mirip  tetapi  beberapa  modifikasi kecil yang dilakukan dapat memberikan nilai yang sangat berbeda. Kondisi lingkungan tumbuh juga dapat memberikan perbedaan hasil analisa, tetapi tidak  akan  memberikan  hasil  yang  sangat  jauh berbeda. Berdasarkan fakta ini, nilai yang didapat pada  penelitian  ini  tidak  dapat  dibandingkan dengan hasil analisa peneliti lain
Tabel 5 . Komposisi proksimat di Gracilaria sp, U. lactuca, dan Sargassum sp di beberapa perairan Indonesia
Lokasi Rumput laut Kadar (% b/b) Karbohidrat  Protein Lemak Mineral Pantai Kukup, Gunung Kidul, Jawa Tengah [15] U. lactuca 62,93 17,43 5,17 2,94 Pantai Sepanjang, Gunung Kidul, Jawa Tengah [16] U. lactuca Tidak tersedia 11,00 Tidak tersedia 37,79 Perairan Pameungpeuk [17] U. lactuca 58,1 13,6 0,19 11,2 Perairan Maluku Tenggara [18] Sargassum sp 38,75 13,08 0,03 0,43 Pantai Kupang [19] Sargassum sp 47,52 10,64 1,99 22,56 Pulau Kabung, Bengkayang, Kalimantan Barat [20] Sargassum sp 64,67 2,04 0,81 2,08 Pulau Kelapa, Tuban, Jawa Timur [21] Gracilaria sp 18,77 11,72 0,21 65,63 Karawang, Jawa Barat [22] Gracilaria sp 63,2 13,65 1,65 21,51
4 Kesimpulan Rumput  laut Gracilaria  sp , U.  lactuca ,  dan Sargassum  sp yang  diambil  dari  pantai  Sayang Heulang,  Garut  Selatan,  Jawa  Barat  memiliki kandungan  karbohidrat,  protein,  lemak,  dan mineral  yang  bervariasi.  Variasi  ini  dapat disebabkan oleh jenis rumput laut, lokasi perairan, dan  kondisi  perairan.  Analisa  terhadap  sampel kering memberikan kadar karbohidrat total berada dalam  rentang  11,2-25,3  %;  kadar  protein  total 6,5-8,7%;  kadar  lemak  total  0,3-1  %;  dan  kadar mineral total 23,6-32,5%.

## Ucapan Terima Kasih
Penulis berterima kasih pada Program P2MI ITB 2021.
Daftar Pustaka [1] Kementerian Koordinator Bidang kemaritiman  dan  Investasi  Republik Indonesia. 2018. Menko Maritim Luncurkan Data Rujukan Wilayah Kelautan Indonesia [Internet].
[2] Mulyati,  H.  and  Geldermann,  J.  2016. Managing risks in the Indonesian seaweed supply  chain. Clean  Technologies  and Environmental  Policy ,  Springer  Science and Business Media LLC. 19 (1) 175–89. 10.1007/s10098-016-1219-7
[3] Nufus, C., Nurjanah, N. and Abdullah, A. 2017.  Characteristics  of  Green  Seaweeds from  Seribu  Islands  and  Sekotong  West Nusa Tenggara Antioxidant. Jurnal
Pengolahan  Hasil  Perikanan  Indonesia , Indonesian  Society  Fisheries  Product Processing. 20 (3) 620. 10.17844/jphpi.v20i3.19819 [4] El-Said,  G.F.  and  El-Sikaily,  A.  2013.
Chemical  composition  of  some  seaweed from  Mediterranean  Sea  coast,  Egypt.
Environmental Monitoring and Assessment , 2012/12/05. Netherlands. 185
(7) 6089–99. 10.1007/s10661-012-3009-y
[5] Siahaan, E.A., Asaduzzaman, A.K.M. and Pangestuti, R.
2018. Chemical
Compositions  of  Two  Brown  Seaweed Species  From  Karimun  Jawa,  Indonesia. Marine Research in Indonesia , Indonesian
Institute  of  Sciences.  43  (2)  71–8. 10.14203/mri.v43i2.480
[6] Badan  Standardisasi  Nasional.  1992.  SNI 01-2891-1992  Cara  Uji  Makanan  Dan Minuman.
[7] Kitto, W.H. 1934. Rapid determination of nitrogen  by  a  Kjeldahl-Nessler  process.
The  Analyst ,  Royal  Society  of  Chemistry (RSC). 59 (704) 733. 10.1039/an9345900733 [8] Food  and  Agriculture  Organization  of  the United  Nations.  2002.  Food  energy  - methods of analysis and conversion factors [Internet]. FAO Food and Nutrition Paper 77. Food and Agriculture Organization.
[9] Kumar, M., Gupta, V., Kumari, P., Reddy, C.R.K.  and  Jha,  B.  2011.  Assessment  of nutrient  composition  and  antioxidant potential  of  Caulerpaceae  seaweeds. Journal  of  Food  Composition  and Analysis ,  Elsevier  BV.  24  (2)  270–8. 10.1016/j.jfca.2010.07.007
[10] Bleakley,  S.  and  Hayes,  M.  2017.  Algal Proteins:  Extraction,  Application,  and Challenges Concerning Production. Foods (Basel, Switzerland) , Switzerland. 6 (5) 33. 10.3390/foods6050033
[11] Gomes,  L.,  Monteiro,  P.,  Cotas,  J., Gonçalves, A.M.M., Fernandes, C.,
Gonçalves,  T.  et  al.  2022.  Seaweeds’ pigments  and  phenolic  compounds  with antimicrobial potential. Biomolecular Concepts , Walter de Gruyter GmbH. 13 (1) 89–102. 10.1515/bmc-2022-0003
[12] Perryman,  S.E.,  Lapong,  I.,  Mustafa,  A., Sabang,  R.  and  Rimmer,  M.A.  2017. Potential  of  metal  contamination  to  affect the food safety of seaweed ( Caulerpa spp.) cultured  in  coastal  ponds  in  Sulawesi, Indonesia. Aquaculture  Reports ,  Elsevier BV. 5 27–33. 10.1016/j.aqrep.2016.12.002
[13] Afiah, R.N., Supartono, W. and Suwondo, E.  2019.  Potential  of  heavy  metal contamination  in  cultivated  red  seaweed (Gracilaria  sp.  and  Eucheuma  cottonii) from  coastal  area  of  Java,  Indonesia. IOP Conference Series:
Earth and Environmental  Science ,  IOP  Publishing.
365 (1) 12024. 10.1088/1755- 1315/365/1/012024 [14] Luo,  H.,  Wang,  Q.,  Liu,  Z.,  Wang,  S.,
Long,  A.  and  Yang,  Y.  2020.  Potential bioremediation effects of seaweed Gracilaria lemaneiformis on heavy metals in  coastal  sediment  from  a  typical mariculture  zone. Chemosphere ,  Elsevier BV. 245 125636. 10.1016/j.chemosphere.2019.125636
[15] Costa,  J.F.  da,  Merdekawati, W. and  Otu, F.R.  2018.  Analisis  Proksimat,  Aktivitas Antioksidan, dan Komposisi Pigmen Ulva lactuca  L.  dari  Perairan  Pantai  Kukup. Ournal of Food Technology and Nutrition , 17 1–17.
[16] Sefrienda, A.R., Novianty, H., Jasmadi, J., Suryaningtyas,  I.T.,  Poeloengasih,  C.D., Kumayanjati,  B.  et  al.  2023.  Protein Content  and  Color  of  Green  Macroalgae Ulva  Lactuca  (L.)  on  Soaking  Time  and Drying  Method. Jurnal  Teknologi  Hasil Pertanian ,  Universitas  Sebelas  Maret.  15 (2) 109. 10.20961/jthp.v15i2.59721
[17] Rasyid, A. 2017. Evaluation of Nutritional Composition  of  The  Dried  Seaweed  Ulva lactuca from Pameungpeuk Waters,
Indonesia. Tropical Life Sciences Research ,  2017/07/31.  Malaysia.  28  (2) 119–25. 10.21315/tlsr2017.28.2.9
[18] Jasmadi,  Kusnadi,  A.,  Kumayanjati,  B., Triandiza, T., Pesilette, R.N., Ainarwowa, A.  et  al.  2022.  Nutritional  values  of Sargassum  sp.,  Ulva  sp.,  and  Padina  sp. from  South  East  Molluca  Island  waters.
IOP  Conference  Series:  Earth  and Environmental  Science ,  IOP  Publishing. 1119 (1) 12043. 10.1088/1755- 1315/1119/1/012043
[19] Salosso,  Y.  2019.  Nutrient  and  alginate content of macroalgae Sargassum sp. from Kupang Bay waters, East Nusa Tenggara,
Indonesia. AACL Bioflux , 12 (6) 2130–6.
[20] Novi Sumarni, T., Safitri, I., Kushadiwijayanto, A.A. and Sofiana, M.S. 2022.  Analisis  Kandungan  Proksimat  dan Mineral  Zink  Dari  Sargassum  sp.  Asal Perairan Pulau Kabung. Oseanologia , 1 (1) 24.
[21] Kustantinah, K., Hidayah, N., Noviand, C., Astuti,  A.  and  Paradhipta,  D.H.V.  2023. Nutrients content of four tropical seaweed species  from  Kelapa  Beach,  Tuban, Indonesia  and  their  potential  as  ruminant feed. Biodiversitas  Journal  of  Biological Diversity , UNS Solo. 23 (12). 10.13057/biodiv/d231213
[22] Fadhlullah, M., Prasetyati, S.B., Pudoli, I. and  Lo,  C.  2022.  Preliminary  Economic
Potential Evaluation of Seaweed Gracilaria sp.  Biomass  Waste  as  Bioindustry Feedstock Through a Biorefinery Approach:  A  Case  Study  in  Karawang, Indonesia. 3BIO:  Journal  of  Biological Science,  Technology  and  Management , The Institute for Research and Community Services  (LPPM)  ITB.  4  (1)  42–53. 10.5614/3bio.2022.4.1.6