## Journal of Pharmaceutical and Health Research

## ISSN 2721-0715 (media online)
DOI 10.47065/jharma.v4i1.2886

## Penetapan Kadar Fenol Total dan Aktivitas Antioksidan dari Ekstrak Etanol Kulit Kentang (Solanum Tuberosum L.)
Vinda Maharani Patricia * , Tasya Luthfiyyah, Livia Syafnir
Universitas Islam Bandung, Bandung, Indonesia Email: 1* vinda.maharani@unisba.ac.id , 2 tasyaluthfiyyah@gmail.com, 3 liviasyafnir@gmail.com
Abstrak − Indonesia merupakan salah satu negara yang memiliki keanekaragaman tanaman, salah satu dari sekian tanaman itu adalah tanaman kentang ( Solanum tuberosum L.). Selama ini, kulit kentang hanya berupa limbah dari hasil pengolahan kentang yang tidak terpakai dan terbuang. Senyawa  – senyawa yang terdapat pada kulit kentang memiliki aktivitas farmakologis salah satunya adalah antioksidan.  Tujuan  dari  penelitian  ini  adalah  untuk  mengetahui  kadar  fenol  total  serta  aktivitas  antioksidan  yang  dihasilkan  oleh ekstrak etanol kulit kentang. Metode yang digunakan adalah menggunakan metode Folin-Ciocalteu untuk kadar fenol total dan metode DPPH  (2,2-difenil-1-pikrilhidrazil)  untuk pengujian  antioksidan.  Hasil yang  didapatkan dari penelitian  ini  adalah  kadar  fenol  total dalam ekstrak etanol kulit kentang adalah sebesar 152,9 mg GAE/g ekstrak dan dengan nilai IC50 sebesar 30,339 ppm yang artinya ekstrak etanol kulit kentang memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat.
Kata Kunci: Kulit kentang; fenol total; antioksidan; DPPH
Abstract − Indonesia is one of the countries with a diversity of plants, one of which is the potato plant ( Solanum tuberosum L.). Some compounds found in potato peels have pharmacological activities, one of which is antioxidants. This study aimed to determine the total phenol content and the antioxidant activity produced by potato peel ethanol extract. The methods for total phenolic content used the Folin-Ciocalteu method and the DPPH(2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl) method for antioxidant activity. The result obtained from this study was that the total phenol content in ethaol extract of potato peel was 152.9 mg GAE / g extract and antioxidant activit y showed with IC 50 value was 30,339 ppm, which means that potato peel ethanol extract has a very strong antioxidant activity.
Keywords : Potato peel; total phenolic content; antioxidant activity; DPPH

## 1. PENDAHULUAN
Indonesia  merupakan  salah  satu  negara  yang  memiliki  komoditi  holtikultura  yang  cukup  besar,  baik  dari  segi  buah  – buahan  hingga  sayuran,  yang  dimana  salah  satu  dari  sekian  komoditi  tersebut  adalah  tanaman  kentang  ( Solanum tuberosum L.). Kentang merupakan salah satu makanan pokok utama bagi manusia dan tanaman terbesar keempat yang ditanam  di  seluruh  dunia  setelah  padi,  gandum,  dan  jagung  (Singh  &  Saldaña,  2011).  Kulit  kentang  yang  merupakan produk sampingan limbah dari pengolahan kentang, dapat dianggap sebagai sumber baru antioksidan alami karena kulit kentang  mengandung  sejumlah  senyawa  antioksidan  seperti  senyawa-senyawa  golongan  fenolik,  seperti  senyawa  dari golongan flavonoid (flavononol, flavonol, flavon, isoflavon, dan flavan),  senyawa-senyawa amino fenolik dan fenolat sederhana (kumarin, stilben, lignin, lignan, dan tanin) yang secara efektif dapat menangkal berbagai radikal bebas dalam kondisi in (Albishi et al., 2013).
Kentang (Solanum tuberosum L.) merupakan makanan pokok utama bagi manusia dan tanaman terbesar keempat yang ditanam di seluruh dunia setelah padi, gandum, dan jagung. Kentang memiliki beberapa manfaat bagi kesehatan, diantaranya yaitu dapat  mengatasi  penyakit obesitas, diabetes, gastritis, dan konstipasi. Kentang juga dapat  mengatasi luka bakar, luka kaki terbuka, dan retak. Hingga saat ini, umumnya saat mengonsumsi buah dan sayur, masyarakat akan membuang  bagian  kulitnya  sehingga  bagian  kulit  tersebut  menjadi  limbah.  Kulit  kentang  yang  merupakan  produk sampingan limbah dari pengolahan kentang, dapat dianggap sebagai sumber baru antioksidan alami karena kulit kentang mengandung sejumlah senyawa antioksidan seperti senyawa-senyawa golongan fenolik, seperti senyawa dari golongan flavonoid (flavononol, flavonol, flavon, isoflavon, dan flavan), senyawa-senyawa amino fenolik dan fenolat sederhana (kumarin, stilben, lignin, lignan, dan tanin) yang secara efektif dapat menangkal berbagai radikal bebas dalam kondisi in vitro( Luthfiyyah et al., 2022).
Menurut  Miratunnisa  et  al.,  (2015)  Kulit  kentang  merupakan  bahan  makanan,  tidak  banyak  orang  tahu  untuk memanfaatkannya dan dibuang begitu saja. Kulit kentang diduga memiliki kandungan senyawa polifenol. Kandungan senyawa  fenolik  dalam  kulit  kentang  memungkinkan  tinggginya  aktivitas  antioksidan.  ekstrak  etanol  kulit  kentang diamati  melalui  terbentuknya  zona  bening  biakan  propionibacterium  acnes  di  sekitar  lubang  yang  berisi  ekstrak  kulit kentang pada berbagai macam konsentrasi. Zona bening atau Zona hambat adalah zona yang terbentuk dari penghambatan pertumbuhan bakteri. Ekstrak kulit kentang diuji aktivitas antibakterinya terhadap Propionibacterium acnes menggunakan metode difusi agar yang diberi lubang (metode perforasi atau sumuran), dengan diameter lubang 0,6 cm.
Penelitian lainnya dilakukan Aliah et al., (2021) Pada penelitian ini sampel yang digunakan adalah kulit kentang (Solanum  tuberosum  L.)  dimana  kulit  kentang  memiliki  kandungan  glycoalkalod  dan  flavonoid.  Mekanisme  kerja kuersetin dalam menurunkan kadar glukosa darah yaitu menjaga sel β pankreas tetap bekerja secara normal. Kuersetin juga mempunyai kemampuan sebagai inhibitor dari kerja enzim α-glucosidase, selain mampu bekerja sebagai inhibitor enzim α-glucosidase, kuersetin juga mampu menghambat transport glukosa oleh GLUT2. GLUT2 (Glucose Transporter 2)  adalah  suatu  protein  transporter  glukosa  yang  terdapat  pada  membran  usus.  GLUT2  (Glucose  Transporter  2) merupakan pengangkut glukosa dari saluran cerna masuk kedalam darah sehingga apabila GLUT2 (Glucose Transporter 2) dihambat, glukosa yang masuk ke dalam darah berkurang dan tidak terjadi penumpukan glukosa dalam darah sehingga tidak  terjadi  peningkatan  kadar  gula  darah.  Penelitian  ini  diawali  dengan  pengumpulan  sampel  yaitu  buah  kentang

## Journal of Pharmaceutical and Health Research

## ISSN 2721-0715 (media online)
DOI 10.47065/jharma.v4i1.2886
sebanyak  14  kg  yang  diperoleh  dari  pasar  antang  raya  selanjutnya  dilakukan  tahap  penyiapan  sampel  buah  kentang (Solanum  tuberosum  L.)  dengan  cara  dicuci  dibawah  air  mengalir,  lalu  dikupas  kemudian  diambil  kulitnya  dan dikeringkan tanpa terkena cahaya langsung(Aini & Hidayat, 2022).
Banyaknya  kandungan  senyawa  yang  terdapat  pada  kulit  kentang,  sehingga  kulit  kentang  memiliki  beberapa aktivitas, salah satunya adalah sebagai  penangkal radikal bebas / antioksidan. Menurut  penelitian yang dilakukan oleh Sampaio  et  al.  (2021)  kulit  kentang  mengandung  senyawa  –  senyawa  fenolik  seperti  antosianin  dan  turunannya  dan memiliki aktivitas antioksidan sebagai antitumor. Penelitian lainnya yang dilakukan oleh Silva-Beltrán et al. (2017) yang membandingkan  aktivitas  antioksidan  antara  ekstrak  air  dan  ekstrak  metanol  yang  dimana  ekstrak  etanol  memiliki aktivitas antioksidan yang lebih tinggi dibandingkan dengan ekstrak air (1.40, 0.38, and 4.00 mmol TE/g). Oleh  karena itu, dengan banyaknya aktivitas farmakologi yang dihasilkan oleh kulit kentang khususnya mengenai antioksidan, penulis tertarik  untuk  melakukan  penelitian  terhadap  ekstrak  kulit  kentang  menggunakan  pelarut  lainnya  yaitu  etanol  yang bertujuan untuk mengetahui kadar fenol total dan aktivitas antioksidan yang terdapat pada ekstrak etanol kulit kentang dengan menggunakan metode DPPH (2,2-difenil-1-pikrilhidrazil) .
Berdasarkan  uraian  latar  belakang  diatas  kulit  kentang  memiliki  manfaat  sebagai  antiokidan  yang  sangat bermanfaat bagi tubuh manusia, sehingga penting dilakukannya penelitian tentang “ Penetapan kadar fenol total dan aktivitas antioksidan dari ekstrak etanol kulit kentang ( solanum tuberosum l.)”

## 2. METODOLOGI PENELITIAN

## 2.1 Pembuatan Simplisia
Sebanyak 200 gram simplisia kulit kentang diekstraksi menggunakan metode maserasi dengan pelarut etanol 96%. Proses maserasi dilakukan selama 3 x 24 jam, kemudian disaring sehingga diperoleh filtratnya. Filtrat dipekatkan dengan rotary evaporator pada suhu 50°C sehingga diperoleh ekstrak kental etanol kulit kentang. Ekstrak kental kemudian disimpan pada wadah kedap udara untuk selanjutnya dilakukan pengujian.

## 2.2 Skrining Fitokimia

## 1. Identifikasi Alkaloid
Sebanyak 2 g serbuk simplisia dibasahi dengan 5 mL amonia dan digerus dalam mortar. Kloroform sebanyak 20 mL ditambahkan  ke  dalam  mortar  dan  digerus  kuat-kuat.  Campuran  disaring,  filtrat  yang  diperoleh  diteteskan  pada kertas saring  dan diberi beberapa tetes pereaksi  Dragendorf. Reaksi  positif ditunjukkan oleh pembentukan warna merah atau jingga. Sisa filtrat diekstraksi dua kali dengan asam klorida 10% (1:2) dan fraksi asam diambil. Fraksi asam dibagi menjadi dua tabung masing-masing 5 mL. Tabung pertama ditetesi pereaksi Dragendorf, positif alkaloid bila terbentuk  endapan merah bata. Tabung kedua ditetesi  pereaksi  Mayer dan reaksi  positif ditunjukkan dengan terbentuknya endapan putih (Farnsworth, 1966).
2. Identifikasi Fenolik
Ekstrak air dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian ditetesi larutan FeCl 3 10%. Hasil positif senyawa fenol ditunjukkan dengan terbentuknya warna hijau, biru, atau hitam (Harborne, 1987)
3. Identifikasi Flavonoid
Sebanyak 1 g simplisia dipanaskan dalam 100 mL air hingga air mendidih selama 5 menit kemudian disaring dan didinginkan (ekstrak air). Untuk pemeriksaan flavonoid  dilakukan dengan 5 mL ekstrak air yang dimasukkan ke dalam  tabung  reaksi. Serbuk  magnesium,  2 mL HCl  2  N  serta  5  mL  amil  alkohol  dimasukkan  ke  dalam  tabung reaksi. Tabung reaksi ditutup dan dikocok kuat kemudian dibiarkan hingga menjadi dua fase. Hasil positif flavonoid ditunjukkan dengan terbentuknya warna jingga pada lapisan amil alkohol (Farnsworth, 1966).
4. Identifikasi Tanin
Untuk pemeriksaan tanin, ekstrak air dimasukkan ke dalam tiga tabung reaksi dengan masing-masing 3 mL ekstrak. Tabung pertama ditetesi  larutan FeCl 3 10%. Hasil positif senyawa fenol  ditunjukkan dengan  terbentuknya warna hijau,  biru,  atau  hitam.  Tabung  kedua  ditetesi  larutan  gelatin  1%.  Hasil  positif  tanin  ditunjukkan  dengan pembentukan endapan putih. Tabung ketiga ditetesi pereaksi Steasny. Hasil positif tanin katekat ditunjukkan dengan pembentukan  endapan  merah.  Campuran  dari  tabung  ketiga  disaring  dan  filtratnya  ditambahkan  natrium  asetat hingga jenuh. Filtrat kemudian ditetesi larutan FeCl 3 10%. Hasil positif tanin galat ditunjukkan dengan perubahan warna menjadi biru tinta (Farnsworth, 1966)
5. Identifikasi Kuinon
Pemeriksaan kuinon dilakukan terhadap 2 mL fase air dari pemeriksaan flavonoid dan 2 mL fase air di atas endapan gelatin pada pemeriksaan tanin di dalam dua tabung reaksi berbeda. Ke dalam dua tabung tersebut masing-masing ditambahkan  beberapa  tetes  larutan  NaOH.  Hasil  positif  kuinon  ditunjukkan  dengan  perubahan  warna  menjadi merah (Farnsworth, 1966).

## Journal of Pharmaceutical and Health Research

## ISSN 2721-0715 (media online)
DOI 10.47065/jharma.v4i1.2886
6. Identifikasi Saponin
Sebanyak  10  mL  ekstrak  air  dikocok  vertikal  selama  10  detik  dan  dibiarkan  selama  10  menit.  Hasil  positif ditunjukkan dengan terbentuknya busa yang mantap selama 10 menit dengan tinggi 1-10 cm. Ke dalam tabung reaksi kemudian ditambahkan beberapa tetes asam klorida 2 N. Hasil positif saponin ditunjukkan dengan busa yang tetap stabil (Farnsworth, 1966).
7. Identifikasi Steroid dan Triterpenoid
Sebanyak 1 gram serbuk simplisia dimaserasi dengan 20 mL eter selama 2 jam. Hasil maserasi kemudian disaring dan filtrat  diuapkan. Ke dalam residu  diteteskan pereaksi  Liebermann-Burchard. Hasil positif steroid/triterpenoid ditunjukkan dengan pembentukan warna biru hijau atau merah ungu (Farnsworth, 1966).

## 2.3 Penetapan Kadar Fenol Total
Untuk  pembuatan  larutan  uji,  ditimbang  sebanyak  5  mg  ekstrak  kulit  kentang  kemudian  dilarutkan  dengan  10  mL methanol  p.a  sehingga  diperoleh  konsentrasi  500  ppm.  Selanjutnya  dari  larutan  tersebut  dipipet  ebanyak  0,25  mL kemudian ditambahkan dengan 2,5 mL reagen Folin-Ciocalteu 10% dan dicampur dengan menggunakan vortex selama 1 menit dan dibiarkan selama 5 menit. Setelah itu, ditambahkan 2 mL larutan Na 2 CO 3 1M dan dikocok hingga homogen. Selanjutnya  didiamkan  selama  30  menit  pada  suhu  ruangan  dan  diukur  absorbansinya  pada  panjang  gelombang maksimum  476  nm.  Pengukuran  dilakukan  secara  triplo  sehingga  hasil  lebih  akurat.  Hasil  pengukuran  larutan  uji selanjutnya disubstitusikan ke dalam nilai regresi linier yang didapat dari kurva kalibrasi asam galat, kemudian dihitung nilai kadar total fenolnya. Nilai total fenol dinyatakan dalam setara asam galat (mg GAE/g) (Nabavi et al., 2008).

## 2.4 Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Kulit Kentang menggunakan metode DPPH
Sebanyak 6 mg DPPH ditimbang, kemudian ditambahkan metanol hingga volume 100 mL pada labu takar. Konsentrasi larutan tersebut adalah 60 ppm. Panjang gelombang serapan maksimum DPPH dapat ditentukan dengan cara mereaksikan 2 mL larutan DPPH kemudian ditambahkan 2 mL metanol, lalu dimasukkan kedalam kuvet, selanjutnya divortex hingga homogen  dan  diukur  serapannya  pada  panjang  gelombang  515-517  nm  menggunakan  spektrofotometri  UV-Vis  dan diamati panjang gelombang yang memberikan absorbansi maksimum (Najihudin et al., 2017).
Setelah diperoleh nilai absorbansi, dilakukan perhitungan %inhibisi dengan menggunakan rumus sebagai berikut:
%Inhibisi = Absorbansi Kontrol − Absorbansi Sampel
Absorbansi Kontrol 𝑥100%
Selanjutnya ditentukan nilai IC 50 (konsentrasi sampel yang dapat menghambat atau meredam 50% radikal bebas), dengan rumus sebagai berikut:
Nilai IC50 = (50 − a) b
Keterangan :
A : Intersep B : Konsentrasi

## 2.5 Analisis Data
Analisis  data  dilakukan  dengan  menggunakan  aplikasi  SPPS.  Adapun  pengujian  yang  dilakukan  yaitu  uji  regresi,  uji Kruskal Wallis, dan uji Mann Whitney.

## 3. HASIL DAN PEMBAHASAN

## 3.1 Penapisan Fitokimia Ekstrak Etanol Kulit Kentang
Penapisan  fitokimia  atau  biasa  sering  dikena  dengan  skrining  fitokimia  bertujuan  untuk  mengidentifikasi  golongan senyawa yang terdapat pada sampel secara kualitatif. Dari hasil penapisan fitokimia yang telah dilakukan, ekstrak kulit kentang  mengandung  senyawa  –  senyawa  dari  golongan  alkaloid,  kuinon,  flavonoid,  tannin,  dan  senyawa  –  senyawa golongan fenolik lainnya. Hasil penapisan fitokimia ekstrak etanol kulit kentang dapat dilihat pada tabel 1.

## Journal of Pharmaceutical and Health Research

## ISSN 2721-0715 (media online)
DOI 10.47065/jharma.v4i1.2886
Tabel 1. Penapisan Fitokimia Ekstrak Etanol Kulit Kentang
Golongan Senyawa Pereaksi Identifikasi Alkaloid Dregendorf + Mayer + Fenolik FeCl3 10% ++ Flavonoid Serbuk Mg+ HCl 2N + Tanin Katekat Steasny + Tanin Galat FeCl3 10% ++ Kuinon NaOH + Saponin Uji Busa - Steroid dan Triterpenoid Liebermann-Burchard -
Keterangan : (-) = tidak terdeteksi ; (+) = terdeteksi ; (++) = terdeteksi lebih kuat
Pada penelitian ini, golongan senyawa yang terdeteksi sangat kuat adalah golongan senyawa fenolik yang dimana golongan senyawa ini merupakan golonga senyawa yang sangat luas dimana suatu senyawa dengan hanya memiliki gugus benzena yang berikatan dengan gugus hidroksi sudah dapat terdeteksi sebagai senyawa golongan fenolik. Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Sotillo et al. (1998)  senyawa – senyawa golongan fenolik utama yang terkandung dalam kulit kentang adalah asam klorogenat (50,31%), asam galat (41,67%), prokatekin (7,815%), dan asam kafeat (0,21%).

## 3.2 Penetapan Kadar Fenol Total
Penetapan kadar fenol total dilakukan menggunakan pereaksi Folin-Ciocalteu dan asam galat sebagai pembanding. Folin- Ciocalteu merupakan pereaksi yang digunakan untuk menetapkan kadar fenol total karena pereaksi tersebut dapat bereaksi dengan  semua  jenis  senyawa  fenolik  (Da’i  et  al.,  2011).  Prinsip  pengukuran  kandungan  fenol  dengan  reagen Folin- Ciocalteau adalah terbentuknya senyawa kompleks berwarna biru. Asam galat digunakan sebagai standar karena senyawa ini sangat efektif untuk membentuk senyawa kompleks dengan reagen Folin-Ciocalteu . Hal ini disebabkan karena asam galat  memiliki  gugus  hidroksil  dan  ikatan  rangkap  terkonjugasi  pada  masing-masing  cincin  benzene.  Gugus  fenolik- hidroksi  mereduksi  asam  heteropoli  (fosfomolibdat-fosfotungstat)  yang  terdapat  dalam  reagen  folin  menjadi  suatu kompleks  molibdenum-tungsten  berwarna  biru  yang  dapat  terdeteksi  dengan  Spektrofotometer  UV-Vis  (Lamuela- Raventós, 2017). Penetapan kadar fenol ini bertujuan menentukan kadar total fenol dalam ekstrak yang diperoleh dari persamaan  kurva  standar  antara  konsentrasi  asam  galat  terhadap  data  absorban.  Data  kurva  standar  dapat  dilihat  pada gambar 1. Dari data kurva standar tersebut, didapatkan persamaan garis kurva standar y = 0,006x + 0,0183 dengan nilai R² = 0,9938. Dari persamaan garis kurva standar tersebut diperoleh kadar total fenol sebesar 152,9 mg GAE/g ekstrak.

## Gambar 1. Kurva Kalibrasi Standar Asam Galat

## 3.3 Aktivitas Antioksidan Menggunakan Metode DPPH
Pada penelitian ini, uji aktivitas antioksidan dilakukan dengan menggunakan metode DPPH (1,1-Difenil-2-pikrilhidrazil) dengan  menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis.  Metode  uji  antioksidan  menggunakan  DPPH  merupakan  salah  satu metode uji kuantitatif untuk menentukan daya aktivitas kulit kentang sebagai antioksidan. Metode DPPH dipilih karena merupakan  metode  yang  sederhana,  mudah,  cepat  dan  peka  serta  hanya  memerlukan  sedikit  sampel  untuk  evaluasi aktivitas antioksidan dari senyawa bahan alam (Molyneux, 2004).
Prinsip  pengukuran  aktivitas  antioksidan  secara  kuantitatif  menggunakan  metode  DPPH  ini  adalah  adanya perubahan intensitas warna ungu DPPH yang sebanding dengan konsentrasi larutan DPPH tersebut. Radikal bebas DPPH yang  memiliki  elektron  tidak  berpasangan  akan  memberikan  warna  ungu  dan  akan  berubah  menjadi  kuning  saat elektronnya  berpasangan.  Perubahan  warna  ini  akan  memberikan  perubahan  absorbansi  pada  panjang  gelombang

## Journal of Pharmaceutical and Health Research

## ISSN 2721-0715 (media online)
DOI 10.47065/jharma.v4i1.2886
maksimum  DPPH  menggunakan  spektrofotometer  UV-Vis  sehingga  akan  diketahui  nilai  aktivitas  peredaman  radikal bebas yang dinyatakan dengan nilai IC 50 ( Inhibitory concentration ). Nilai IC 50 didefinisikan sebagai besarnya konsentrasi senyawa uji yang dapat meredam radikal bebas sebanyak 50%. Semakin kecil nilai IC 50 maka aktivitas peredaman radikal bebas semakin tinggi (Irivibulkovit et al., 2018).
Pada  pengukuran  aktivitas  antioksidan  secara  spektrofotometer  hal  yang  pertama  dilakukan  adalah  melakukan pengukuran panjang gelombang maksimal DPPH. Dari hasil pengukuran panjang gelombang maksimal DPPH didapatkan hasil  panjang  gelombang  sebesar  515,5  nm  dimana  panjang  gelombang  tersebut  merupakan  panjang  gelombang maksimum  DPPH yang digunakan pada penelitian ini. Panjang gelombang maksimum  ini memberikan serapan paling maksimal dari larutan uji dan memberikan kepekaan paling besar. Setelah melakukan pengukuran panjang gelombang DPPH  maka  selanjutnya  dilakukan  pengukuran  aktivitas  antioksidan  ekstrak  kulit  kentang  dan  vitamin  C.  Vitamin  C digunakan  sebagai  pembanding.  Hal  ini  karena  vitamin  C  merupakan  golongan  vitamin  antioksidan  yang  mampu menangkal  berbagai  radikal  bebas  ekstraselular  karena  vitamin  C  mempunyai  gugus  hidroksi  bebas  yang  bertindak sebagai  penangkap  radikal  bebas  dan  jika  mempunyai  gugus  polihidroksi  akan  meningkatkan  aktivitas  antioksidan (Isnindar et al., 2011). Hasil pengukuran aktivitas antioksidan dan vitamin C dapat dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2. Hasil Pengukuran aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol Kulit Kentang dan Vitamin C
Sampel Konsentrasi (ppm) % Inhibisi IC 50 (ppm) Ekstrak Kulit kentang 10 25,625
30,339
20 38,25
30
50,375
40 60,625 50 73,125
Vitamin C 2 19,625 6,375 4 34,5
6
48,25
8 61,75 10 73,25
Menurut Molyneux, (2004), parameter untuk menginterpretasikan hasil pengujian DPPH yaitu dengan nilai IC50 (Inhibitor  Concentration).  Semakin  kecil  nilai  IC50  berarti  semakin  tinggi  aktivitas  antioksidan.  Secara  spesifik  suatu senyawa dikatakan sebagai antioksidan sangat kuat jika nilai IC 50 kurang dari 50 ppm (IC 50 < 50 ppm), kuat (50 ppm < IC 50 < 100 ppm), sedang (100 ppm < IC 50 < 150 ppm), lemah (150 ppm < IC 50 < 200 ppm), dan sangat lemah (IC 50 > 200 ppm).  Berdasarkan  data  pada  Tabel  2,  maka  ekstrak  kulit  kentang  memiliki  aktivitas  antioksidan  yang  sangat  kuat, begitupun dengan vitamin C. Namun, ekstrak kulit kentang memiliki aktivitas antioksidan yang lebih lemah dibandingan dengan senyawa pembandingnya yaitu vitamin C. Hal ini diduga disebabkan karena vitamin C merupakan senyawa murni, sedangkan  pada  ekstrak  kulit  kentang  masih  dalam  bentuk  ekstrak  yang  masih  mengandung  berbagai  senyawa  di dalamnya  (Proteggente  et  al.,  2002).  Hasil  uji  aktivitas  antioksidan  pada  penelitian  ini  apabila  dibandingkan  dengan penelitian yang dilakukan oleh Pamolango et al. (2016) membuktikan bahwa kandungan antioksidan pada kulit kentang lebih tinggi dibandingkan dengan daun kentang.

## 4. KESIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian, dapat disimpulkan kadar fenol total dalam ekstrak etanol kulit kentang adalah sebesar 152,9 mg GAE/g ekstrak. Adapun hasil uji aktivitas antioksidan ekstrak kulit kentang mempunyai nilai IC 50 sebesar 30,339 ppm yang artinya ekstrak etanol kulit kentang memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat. Adapun identifikasi senyawa pada ekstrak etanol kulit kentang sangat diperlukan guna untuk mengenai senyawa – senyawa yang memberikan aktivitas sebagai antioksidan yang terkandung dalam ekstrak etanol kulit kentang.

## REFERENCES
Aini, D. M., & Hidayat, R. (2022). Uji Organoleptik Dan Uji Fisik Pada Sediaan Gel Handsanitizer Ekstrak Aloe Vera: Sediaan Gel
Handsanitizer Ekstrak Aloe Vera. Jurnal Baswara Indonesia , 01 (01), 1–4.
https://ejournal.baswara.org/index.php/BI/article/view/9
Albishi, T., John, J. A., Al-Khalifa, A. S., & Shahidi, F. (2013). Phenolic content and antioxidant activities of selected potato varieties and their processing by-products. Journal of Functional Foods , 5 (2), 590–600. https://doi.org/10.1016/j.jff.2012.11.019

## Journal of Pharmaceutical and Health Research

## ISSN 2721-0715 (media online)
DOI 10.47065/jharma.v4i1.2886
Aliah, A. I., Afriana, E., & Sari, N. (2021). Uji Efektivitas Antihiperglikemik Ekstrak Etanol Kulit Kentang (Solanum tuberosum L.) Terhadap  Mencit  Jantan  (Mus  Musculus)  Dengan  Metode  Uji  Toleransi  Glukosa. Media  Kesehatan  Politeknik  Kesehatan Makassar , 16 (1), 159. https://doi.org/10.32382/medkes.v16i1.1801 Da’i, M., Melannisa, R., Suhendi, A., & Atmaja, A. I. . (2011). UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK ETANOL BUAH
Psidium guajava L, Melaleuca leucadendron L, Capsicum frutescens L, dan Anethum graveolens L DENGAN METODE DPPH BESERTA  PENETAPAN  KADAR  FENOLIK  TOTALNYA. Pharmacon:  Jurnal  Farmasi  Indonesia , 12 (2),  60–64. https://doi.org/10.23917/pharmacon.v12i2.33
Farnsworth,  N.  .  (1966).  Biological  and  Phytochemical  Screening  of  Plants. Jorunal  of  Pharmaceutical  Sciences , 55 (3),  225–276. https://doi.org/10.1126/science.151.3712.874
Harborne, J. . (1987). Metode Fitokimia: Penuntun Cara Modern Menganalisis Tumbuhan . ITB Press.
Irivibulkovit,  K.  S.,  Ouanthavong,  S.  N.,  &  Ameenoi, Y.  S.  (2018).  Paper-based  DPPH  Assay  for  Antioxidant  Activity  Analysis.
Analitical Siences , 34 , 795–800.
Isnindar, Wahyuono, S., & Setyowati, E. P. (2011). ISOLASI DAN IDENTIFIKASI SENYAWA ANTIOKSIDAN DAUN KESEMEK (  Diospyros  kaki  Thunb  .)  DENGAN  METODEDPPH  (  2  ,  2-DIFENIL-1-  PIKRILHIDRAZIL  )  ISOLATION  AND IDENTIFICATION OF ANTIOXIDANT COMPOUND OF PERSIMMON. Majalah Obat Tradisional , 16 (3), 157–164.
Lamuela-Raventós, R. M. (2017). Folin-Ciocalteu method for the measurement of total phenolic content and antioxidant capacity.
Measurement of Antioxidant Activity and Capacity: Recent Trends and Applications , 107–115. https://doi.org/10.1002/9781119135388.ch6
Luthfiyyah,  T.,  &  Patricia,  V.  M.  (2022).  Karakterisasi  dan  Penetapan  Kadar  Flavonoid  Total  Ekstrak  Kulit  Kentang  (Solanum tuberosum L.). Bandung Conference Series: Pharmacy , 2 (2), 392–398. https://doi.org/10.29313/bcsp.v2i2.4223
Miratunnisa, Hajar, S., & Mulqie, L. (2015). Uji Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Kulit Kentang (Solanum tuberosum L) terhadap Propionibacterium. Prosiding Penelitian SPeSIA Unisba , 510–516.
Molyneux, P. (2004). The Use of The Stable Free Radical Diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) for Estimating Antioxidant Activity. J. Sci. Technol , 26 (2), 100–109.
Nabavi, S. M., Ebrahimzadeh, M. A., Nabavi, S. F., Hamidinia, A., & Bekhradnia, A. R. (2008). Determination of antioxidant activity, phenol and flavonoid content of Parrotia persica Mey. Pharmacologyonline , 2 , 560–567.
Najihudin, A., Chaerunisaa, A., & Subarnas, A. (2017). AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK dan FRAKSI KULIT BATANG TRENGGULI (Cassia fistula L) DENGAN METODE DPPH. Indonesian Journal of Pharmaceutical Science and Technology , 4 (2), 70. https://doi.org/10.15416/ijpst.v4i2.12354
Pamolango, S. A., Bodhi, W., & Wullur, A. C. (2016). DAUN KENTANG ( Solanum tuberosum ) DENGAN METODE 1 . 1-diphenyl- 2-picrylhydrazyl (DPPH) dan Brine Shrimp Lethality Test (BSLT). Jurnal Ilmiah Farmasi , 5 (3), 75–84.
Proteggente, A. R., Pannala, A. S., Paganga, G., Van Buren, L., Wagner, E., Wiseman, S., Van De Put, F., Dacombe, C., & Rice-Evans, C.  A.  (2002).  The  antioxidant  activity  of  regularly  consumed  fruit  and  vegetables  reflects  their  phenolic  and  vitamin  C composition. Free Radical Research , 36 (2), 217–233. https://doi.org/10.1080/10715760290006484
Sampaio, S. L., Petropoulos, S. A., Dias, M. I., Pereira, C., Calhelha, R. C., Fernandes, Â., Leme, C. M. M., Alexopoulos, A., Santos- Buelga, C., Ferreira, I. C. F. R., & Barros, L. (2021). Phenolic composition and cell-based biological activities of ten coloured potato peels (Solanum tuberosum L.). Food Chemistry , 363 (May). https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.130360 Silva-Beltrán, N. P., Chaidez-Quiroz, C., López-Cuevas, O., Ruiz-Cruz, S., López-Mata, M. A., Del-Toro-sánchez, C. L., Marquez- Rios, E., & Ornelas-Paz, J. D. J. (2017). Phenolic compounds of potato peel extracts: Their antioxidant activity and protection against human enteric viruses. Journal of Microbiology and Biotechnology , 27 (2), 234–241. https://doi.org/10.4014/jmb.1606.06007
Singh,  P.  P.,  &  Saldaña,  M.  D.  A.  (2011).  Subcritical  water  extraction  of  phenolic  compounds  from  potato  peel. Food  Research International , 44 (8), 2452–2458. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2011.02.006
Sotillo, D. ., Hadley, M., & Wolf-Hall, C. (1998). Potato peel extract a nonmutagenic antioxidant with potential antimicrobial activity. Journal of Food Science , 63 (5), 907–910. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.1998.tb17924.x