# Korespondensi:  Balai  Riset  Perikanan  Budidaya  Air  Tawar  dan Penyuluhan  Perikanan.  Jl.  Raya  Sempur  No.  1,  Bogor  16154, Indonesia. Tel.:  +  62  251  8313200 E-mail:  septian08@yahoo.com
Tersedia  online  di:  http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/ma

## EFEKTIVITAS  HIDROGEN  PEROKSIDA  DALAM  PENGENDALIAN  INFEKSI  EKTOPARASIT PADA IKAN LELE Clarias gariepinus
Septyan  Andriyanto *)# ,  Uni  Purwaningsih *) ,  Shofihar  Sinansari **) ,  dan  Yohanna  Retnaning  Widyastuti *)
*) Balai Riset Perikanan Budidaya Air Tawar dan Penyuluhan Perikanan
**) Balai Riset Budidaya Ikan Hias
(Naskah diterima: 21 April 2017; Revisi final: 22 Maret 2018; Disetujui publikasi: 22 Maret 2018)

## ABSTRAK
Penggunaan bahan kimiawi yang aman dan ramah lingkungan merupakan salah satu metode yang banyak digunakan  untuk  pengobatan penyakit  parasitik  pada  budidaya  ikan,  meskipun masih  sedikit  informasi mengenai efektivitas penggunaan hidrogen peroksida untuk pengobatan penyakit parasitik pada ikan air tawar di  Indonesia. Penelitian  bertujuan untuk  mengetahui dosis  efektif hidrogen  peroksida (H 2 O 2 )  dan pengaruhnya  terhadap  infeksi  ektoparasit  pada  ikan  lele Clarias  gariepinus.  Perlakuan  yang  digunakan adalah penambahan H 2 O 2 dalam media pemeliharaan dengan dosis berbeda yaitu: (A) aplikasi H 2 O 2 dosis 100 mg/L, (B) aplikasi H 2 O 2 dosis 200 mg/L, (C) aplikasi H 2 O 2 dosis 300 mg/L, dan (D) tanpa aplikasi H 2 O 2 atau kontrol.  Pemberian  hidrogen  peroksida  dilakukan  satu  kali  pada  awal  pengujian  dan  tiap  perlakuan menggunakan  tiga  ulangan.  Pemeriksaan  sampel  dilakukan  setiap  hari  terhadap  tingkat  infestasi  dan prevalensi ektoparasit selama enam hari pemeliharaan. Pengamatan hanya dilakukan pada parasit dewasa yang  memiliki  organ tubuh  lengkap  dan  telah melewati  fase  telur.  Fokus penelitian  untuk  memperoleh informasi dosis H 2 O 2 yang paling efektif menekan infeksi ektoparasit selama enam hari pengujian. Hasil penelitian menunjukkan bahwa aplikasi hidrogen peroksida dosis 300 mg/L efektif menekan tingkat infestasi dan prevalensi parasit Trichodina sp., Dactylogyrus sp., dan Gyrodactylus sp., diikuti dosis 200 mg/L, 100 mg/ L, dan terendah pada kontrol. Berdasarkan analisis statistik diperoleh nilai infestasi parasit yang berbeda nyata (P<0,05) antara perlakuan aplikasi H 2 O 2 dibandingkan dengan kontrol atau tanpa aplikasi H 2 O 2 .
KATA KUNCI: parasit; prevalensi; hidrogen peroksida
ABSTRACT: The effectivity of hydrogen peroxide application to control ectoparasite infestations on African catfish, Clarias gariepinus. By: Septyan Andriyanto, Uni Purwaningsih, Shofihar Sinansari, and Yohanna Retnaning Widyastuti
Chemical compounds that are safe and environmentally friendly has been widely used to treat parasitic diseases in fish farming. However, there is limited information on the effectiveness of the application of hydrogen peroxide to treat parasitic diseases in freshwater fish in Indonesia. The study was aimed to determine the effective dose of hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) and its influence on the presence of ectoparasites on Clarias gariepinus catfish. The treatment used was the addition of H 2 O 2 in the media preservation at different doses, namely: the application of H 2 O 2 dose of (A) 100 mg/L, (B) 200 mg/L, (C) 300 mg/L, and (D) without H 2 O 2 or control. Treatment media were exposed to hydrogen peroxide once at the beginning of the test and each treatment used three replications. Infestation and ectoparasite prevalence were observed daily for six days. The observations were only performed on adult parasites that have complete organs and passed the egg stage. The study focuses on obtaining the most effective dose of H 2 O 2 to suppress ectoparasite infection within six days. The results showed that the application of hydrogen peroxide of 300 mg/L was the most effective dose to suppress the infestation level and prevalence of Trichodina sp., Dactylogyrus sp., and Gyrodactylus sp., followed by 200 mg/L, 100 mg/L, and the lowest was in control. The statistical analysis of the parasite infestation had shown a significant difference (P<0.05) between the treatment of H 2 O 2 as compared with the control.
KEYWORDS: parasites; prevalence; hydrogen peroxide

## PENDAHULUAN
Penyakit merupakan kendala serius dalam proses budidaya  ikan.  Salah  satu  penyakit  tersebut  adalah serangan  parasit  yang  menjadi  salah  satu  faktor predisposisi bagi infeksi organisme patogen lainnya yang  lebih  berbahaya  (secondary  infection).  Beberapa spesies  ektoparasit  yang  umumnya  ditemukan menginfestasi  ikan  air  tawar  berasal  dari  golongan protozoa dan cacing monogenea yaitu Trichodina sp., Dactylogyrus  sp.,  dan  Gyrodactylus  sp.  Ketiga  parasit tersebut  penyebab  munculnya  penyakit  parasitik potensial pada ikan budidaya air tawar (Lom & Dyková, 1992;  Christison  et  al.,  2005).  Jenis  parasit  dari golongan  protozoa  banyak  ditemukan  pada  tubuh inang  dikarenakan  memiliki  karakteristik  berupa pergerakan  yang  cepat,  wilayah  serangan  luas, menyerang  dalam  jumlah  banyak,  serta  memiliki toleransi yang sangat tinggi terhadap suhu perairan (Kabata,  1985).  Sebagian  besar  cacing  monogenea menyerang bagian luar tubuh ikan terutama kulit dan insang, dan jarang menyerang bagian dalam tubuh ikan (William & Jones, 1994).
Trichodina  sp.,  Dactylogyrus  sp.,  dan  Gyrodactylus sp. umumnya ditemukan pada bagian eksternal tubuh ikan  dikarenakan  jenis  parasit  tersebut  bersifat ektoparasit (Singkoh, 2012). Cacing monogenea dari genus  Gyrodactylus  merupakan  patogen  yang berpengaruh  terhadap  keberhasilan  budidaya,  serta keberadaan  ikan  di  habitat  aslinya  (Rubio-Godoy  et al.,  2012).  Beberapa  genus  cacing  monogenea merupakan  patogen  utama  dalam  budidaya  catfish (Prikrylová et al., 2012), di antara spesies parasit dari kelas monogenea yang umumnya menyerang ikan lele yaitu Dactylogyrus sp. dan Gyrodactylus sp. (Dirkesling, 2014).
Penggunaan bahan kimiawi yang aman dan ramah lingkungan merupakan salah satu metode yang banyak digunakan dalam pengobatan penyakit parasitik dan telah  lama  dilakukan  dalam  proses  budidaya  ikan. Namun,  keterbatasan  informasi  terkait  jenis  bahan yang aman dan ramah lingkungan, dosis efektif, serta prosedur  pemberian  yang  tepat  merupakan permasalahan  pada  sebagian  besar  pembudidaya  di Indonesia. Dewan negara-negara Eropa atau European Council berdasarkan Council Regulation (EEC) No. 2377/ 90 telah mengeluarkan peraturan terkait bahan-bahan kimia,  serta  ambang  batas  maksimum  yang diperbolehkan  untuk  dipergunakan  pada  produk peternakan dan perikanan. Beberapa bahan kimia yang diijinkan  penggunaannya  untuk  pencegahan  dan pengobatan penyakit parasitik pada ikan di antaranya acetic acid, betadine,  bithionol, chloramin-t, copper  sul- fate,  formaldehyde,  hydrogen  peroxide,  ivermectin, levamisol, mebendazole, niclosamid, potassium perman-
ganate,  praziquentel,  salt,  trichlorphon  (Kayis  et  al., 2009).
Hidrogen peroksida (H 2 O 2 ) merupakan salah satu bahan kimia yang telah banyak dimanfaatkan untuk kepentingan industri, kesehatan maupun lingkungan. Pada  kegiatan  akuakultur,  hidrogen  peroksida digunakan untuk mengatasi infeksi jamur pada telur ikan, serta mengontrol bakteri dan parasit pada ikan budidaya. Hidrogen peroksida di alam ditemukan pada hampir seluruh permukaan air yang terpapar sinar ul- traviolet dalam bentuk dissolved organic carbon (DOC). Konsentrasi  H 2 O 2 air  tawar  berkisar  antara  0,001 hingga 0,109 mg/L; sedangkan air laut berkisar 0,001 sampai 0,0136 mg/L. Semakin tinggi konsentrasi H 2 O 2 menunjukkan semakin tingginya kandungan DOC pada permukaan air. Hidrogen peroksida memiliki sifat alami mudah larut (degradable) dalam air maupun oksigen. Proses  degradasi  tersebut  melalui  beberapa mekanisme di antaranya reduksi kimiawi dan secara enzimatis berupa dekomposisi  oleh alga, zooplank- ton,  dan  bakteri  heterotropik.  Mikoorganime khususnya  bakteri  berperan  paling  penting  dalam proses degradasi H 2 O 2 dibanding mekanisme kimiawi dan biologi lainnya. Lama waktu yang diperlukan H 2 O 2 untuk terdegradasi dalam air bervariasi antara beberapa menit hingga lebih dari satu minggu, tergantung dari faktor kimia, biologi, dan fisika yang memengaruhinya (Schmidt et al., 2006).
Penelitian aplikasi bahan kimiawi yang aman dan ramah  lingkungan  perlu  dilakukan  dalam  rangka pengendalian  penyakit  parasitik  potensial  pada budidaya  ikan  air  tawar.  Penelitian  bertujuan  untuk mengetahui  dosis  efektif  dari  hidrogen  peroksida, H 2 O 2 dan  pengaruhnya  terhadap  infeksi  ektoparasit pada ikan lele Clarias gariepinus.
Penelitian  hanya  difokuskan  untuk  memperoleh informasi  dosis  efektif  H 2 O 2 ,  serta  data  hasil inventarisasi  dan  identifikasi  ektoparasit  selama pengujian. Efektivitas waktu pemberian, uji mutu, dan keamanan  hidrogen  peroksida  terhadap  ikan  dan lingkungan direncanakan menjadi tema penelitian pada tahun  berikutnya.  Hasil  dari  penelitian  diharapkan dapat menjadi alternatif dalam pengendalian penyakit parasitik potensial pada budidaya ikan lele dan ikan air tawar pada umumnya.

## BAHAN DAN METODE
Ikan lele dengan rerata panjang 9,77 ± 0,89 cm dan rerata  bobot 7,61 ±  1,67 g  digunakan sebagai ikan uji, sedangkan hidrogen peroksida yang digunakan dalam pengujian merupakan hidrogen peroksida p.a. (no. katalog. 8.22287.1000). Ikan diaklimatisasi dalam bak pemeliharaan terlebih dahulu sebelum dilakukan
pengujian. Sebanyak 500 ekor ikan lele diaklimatisasi dalam bak fiber glass ukuran 1.000 L dengan volume air sebanyak 500 L selama empat minggu. Setiap dua minggu  sekali  sebanyak  12  ekor  ikan  uji  diperiksa secara  mikroskopis  untuk  mengetahui  prevalensi ektoparasitnya sebelum diberikan perlakuan. Selama pemeliharaan ikan uji diberi pakan komersial dengan kandungan protein 28% secara ad libitum.
Proses pengujian selanjutnya dilakukan dalam 12 unit bak plastik ukuran 40 L (volume air 10 L). Ikan lele  ditempatkan  dalam  wadah  pengujian  dengan kepadatan  15  ekor/bak.  Perlakuan  yang  diterapkan dalam pengujian adalah pemberian hidrogen peroksida dengan empat dosis berbeda, yaitu: A) 100 mg/L, B) 200 mg/L, C) 300 mg/L, dan D) tanpa pemberian H 2 O 2 sebagai kontrol. Hidrogen peroksida hanya diberikan satu kali yaitu pada awal pengujian untuk enam hari masa pemeliharaan.
Pemeriksaan  parasit  yang  menginfestasi  ikan  uji dilakukan  setiap  hari  selama  enam  hari  periode pengujian.  Parasit  yang  diamati  merupakan  parasit dewasa  dengan  organ  tubuh  lengkap  dan  telah melewati fase telur. Sebanyak dua ekor sampel ikan dari  tiap  perlakuan  diperiksa  setiap  harinya  untuk mengetahui ektoparasit yang menginfestasi. Sampel ikan  dimatikan  terlebih  dahulu  sebelum  dilakukan pemeriksaan  dengan  cara  menusuk  bagian  medulla oblongata menggunakan alat bedah. Bagian tubuh yang diperiksa meliputi kulit, sirip, dan insang. Pemeriksaan kulit dilakukan dengan mengerok lendir (mucus) pada permukaan tubuh ikan uji (termasuk pada bagian tubuh yang terluka) menggunakan cover glass dari arah oper- culum  menuju  ekor.  Pemeriksaan  sirip  dilakukan dengan menggunting bagian sirip punggung atau sirip ekor, terutama yang memiliki bentuk dan penampakan yang  tidak  normal.  Pemeriksaan  insang  dilakukan dengan menggunting lembaran insang (lamella) terluar bagian kanan atau kiri insang, selanjutnya sampel or- gan diletakkan pada kaca preparat yang telah ditetesi akuades untuk diamati secara mikroskopis.
Pengamatan  ektoparasit  dilakukan  di  bawah mikroskop cahaya pada perbesaran 4x, 10x, 20x, dan 40x.  Proses  identifikasi  ektoparasit  mengacu  pada buku identifikasi parasit di antaranya Hoffman (1967), Schell  (1970),  Kudo  (1977),  serta  William  &  Jones (1994).
Pemeriksaan  ektoparasit  mengikuti  prosedur pengujian di laboratorium parasitologi Instalasi Riset Pengendalian  Penyakit  Ikan-Balai  Riset  Perikanan Budidaya Air Tawar dan Penyuluhan Perikanan (IRP2I- BRPBATPP) meliputi dua parameter, yaitu: 1) tingkat infestasi ektoparasit yang dihitung berdasarkan rerata jumlah individu (ind.) ektoparasit yang teramati pada
tiga  lapang  pandang  mikroskop;  dan  2)  prevalensi ektoparasit yang dihitung dari setiap sampel ikan uji dalam  satu  wadah  penelitian  menggunakan  rumus: Prevalensi  =  (jumlah  ikan  yang  terserang  parasit/ jumlah ikan yang diperiksa) x 100%.
Data  tingkat  infestasi  parasit  dianalisis  secara deskriptif dan statistik menggunakan ANOVA dengan tingkat kepercayaan 95% untuk melihat perbedaan dari masing-masing perlakuan.

## HASIL DAN BAHASAN

## Identifikasi  Parasit
Parasit  yang  teridentifikasi  selama  penelitian terdiri atas tiga jenis ektoparasit yaitu Trichodina sp., Dactylogyrus  sp.,  dan  Gyrodactylus  sp.  Pengamatan sampel  ikan  uji  selama  proses  aklimatimasi menunjukkan bahwa ikan-ikan uji pada minggu kedua terinfeksi  parasit  protozoa  Trichodina  sp.  dengan prevalensi  sebesar  87,5%.  Nilai  prevalensi  parasit monogenea Dactylogyrus sp. dan Gyrodactylus sp. yang ditemukan  sebesar  62,5%.  Pada  minggu  keempat dilakukan  pemeriksaan  kembali  dan  diperoleh  nilai prevalensi parasit Trichodina sp. sebesar 83,3%; parasit cacing Dactylogyrus sp. sebesar 75% dan Gyrodactylus sp.  sebesar  58,3%.  Berdasarkan  hasil  pengamatan selanjutnya dilakukan plotting ikan uji untuk penelitian pengujian dosis efektif hidrogen peroksida. Penelitian dilakukan secara bertahap dimulai dengan pengujian dosis  hidrogen  peroksida  secara  in  vitro  dan dilanjutkan uji in vivo.

## Tingkat  Infestasi
Pengamatan tingkat infestasi ektoparasit setelah aplikasi H 2 O 2 dosis 300 mg/L menunjukkan efektivitas tertinggi pada hari ke-6 pasca perlakuan dengan tidak ditemukan  adanya  ektoparasit  (Gambar  1).  Berbeda halnya dengan perlakuan dosis 100 mg/L dan 200 mg/ L, pada akhir penelitian masih ditemukan parasit yang menginfestasi,  meskipun  jumlahnya  tidak  sebanyak dibandingkan  dengan  kontrol.  Infestasi  ektoparasit berfluktuatif  selama  pengujian  yang  diperlihatkan dengan pola yang naik turun. Hal tersebut dikarenakan mekanisme  reaksi  hidrogen  peroksida  dalam  tubuh tiap  parasit  memiliki  waktu  yang  berbeda-beda, sehingga parasit yang ditemukan jumlahnya tidak sama dalam  setiap  pengamatan.  Selain  itu,  siklus  hidup parasit  juga  dapat  memengaruhi  tingkat  infestasi parasit.  Hal  tersebut  dimungkinkan  karena  efek hidrogen  peroksida  lebih  berpengaruh  pada  parasit dewasa  yang  memiliki  organ  tubuh  lengkap dibandingkan dengan parasit yang masih dalam fase telur. Menurut Halliwel & Gutteridge (2015), bahwa hidrogen peroksida memiliki kemampuan menembus
membran dan masuk ke dalam tubuh parasit dewasa untuk  kemudian  bereaksi  dengan  Fe  atau  Cu membentuk  radikal  hidroksil  (OH¯)  yang  bersifat toksik  dan  mematikan  bagi  parasit.  Lebih  lanjut Schmidt  &  Roberts  (1977)  menjelaskan  mekanisme siklus  hidup  langsung  parasit  monogenea  yang umumnya dengan satu inang dimulai dari telur, larva bersilia  oncomiracidium,  dan  dewasa.  Parasit Dactylogyrus vastator mampu mengeluarkan 4-10 telur setiap 24 jam sekali dan bahkan semakin meningkat jumlahnya seiring dengan bertambahnya temperatur. Menurut  Olsen  (1986),  bahwa  telur  Dactylogyrus extensus berkembang selama lima hari pada temperatur 20°C dan menjadi parasit  dewasa setelah 6-10 hari. Reed  et  al.  (2012)  juga  menjelaskan  bahwa  parasit Gyrodactylus bersifat vivipar di mana telur berkembang dan  menetas  di  dalam  uterus,  selanjutnya  larva dilepaskan dan langsung menempel pada inang. Lebih lanjut Schmidt & Roberts (1977) menyebutkan bahwa Gyrodactylus hanya membutuhkan waktu kurang lebih sehari untuk menjadi parasit dewasa setelah dilahirkan.
Pada  akhir  pengujian  diperoleh  rerata  jumlah parasit terendah hingga tertinggi berturut-turut pada perlakuan dosis 300 mg/L, 200 mg/L, 100 mg/L, dan kontrol.  Semakin  meningkatnya  dosis  ternyata berkorelasi pada semakin menurunnya tingkat infestasi ektoparasit  pada  seluruh  kelompok  perlakuan, meskipun  secara  umum  pada  akhir  pengamatan
perlakuan aplikasi H 2 O 2 lebih efektif menekan jumlah parasit  dibanding  tanpa  aplikasi  H 2 O 2 atau  kontrol. Aplikasi H 2 O 2 untuk pengobatan infeksi parasit pada ikan akan efektif dan aman jika digunakan dengan dosis yang  tepat.  Tidak  ditemukannya  ikan  uji  yang  mati selama proses pengujian menunjukkan bahwa aplikasi H 2 O 2 dengan dosis 100-300 mg/L aman digunakan dan tidak berbahaya bagi ikan lele. Sebagaimana pernyataan Schmidt  et  al.  (2006)  bahwa  hidrogen  peroksida merupakan  salah  satu  bahan  kimia  yang  telah memenuhi  persyaratan  sebagai  desinfektan  dalam kegiatan akuakultur. Hidrogen peroksida dengan dosis 250-500 mg/L telah digunakan untuk mengatasi infeksi jamur pada telur ikan, serta mengontrol bakteri dan parasit  yang  menginfeksi  ikan  budidaya.  Hidrogen peroksida juga memiliki sifat alami mudah larut dan tidak berbahaya bagi ikan budidaya apabila diberikan dengan dosis yang tepat.
Pemberian  H 2 O 2 dengan  dosis  300  mg/L menghasilkan tingkat infestasi terendah pada ketiga jenis ektoparasit (Trichodina sp., Dactylogyrus sp., dan Gyrodactylus  sp.)  (Gambar  2).  Hasil  tersebut menunjukkan bahwa aplikasi H 2 O 2 dosis 300 mg/L lebih efektif  menurunkan  infestasi  Trichodina  sp., Dactylogyrus sp., dan Gyrodactylus sp. dibanding dosis 100  mg/L  dan  200  mg/L.  Perlakuan  kontrol  tidak menunjukkan  efektivitas  terhadap  ketiga  jenis ektoparasit  ditunjukkan  dari  jumlah  parasit  yang
Gambar 1. Tingkat  infestasi  ektoparasit pada  ikan  lele  selama pengujian  dosis  H 2 O 2 . Perlakuan A= H 2 O 2 dosis 100 mg/L, B= H 2 O 2 dosis 200 mg/L, C= H 2 O 2 dosis 300 mg/L, D= tanpa pemberian H 2 O 2 (kontrol).
Figure 1. Ectoparasites infestation level on catfish during the application of H 2 O 2 . Treatment A= H 2 O 2 dose of 100 mg/L, B= H 2 O 2 dose of 200 mg/L, C= H 2 O 2 dose of 300 mg/ L, D= without H 2 O 2 application (control). -1 3 7 11 15 19 23 27 1 2 3 4 5 6 7 R er at a ju m lah p ar as it A ve ra ge n um be r of p ar asi te s (i n d .) Pengamatan (ke-) / Observation to A B
C D
dibandingkan tanpa aplikasi H 2 O 2 . Menurut Smith & Schwarz (2009), siklus hidup Trichodina sp. sangatlah sederhana dengan satu inang dan proses infeksi terjadi melalui  kontak  langsung.  Sementara  proses reproduksi dilakukan dengan pembelahan biner yang terjadi pada kondisi temperatur optimum.
Hasil  analisis  statistik  terhadap  tingkat  infestasi ektoparasit secara keseluruhan menunjukkan adanya perbedaan  yang  nyata  (P<0,05)  antara  kelompok perlakuan aplikasi H 2 O 2 dengan kontrol. Namun, tidak terdapat  perbedaan  yang  nyata  (P>0,05)  antar kelompok perlakuan H 2 O 2 dosis 100 mg/L, 200 mg/L, dan dosis 300 mg/L (Gambar 3). Menurut Schmidt et al. (2006), bahwa aplikasi hidrogen peroksida dengan konsentrasi  berkisar  50  mg/L  sampai  dengan  1.000
Gambar 2. Tingkat infestasi ektoparasit pada ikan lele dengan pengujian H 2 O 2 dosis 100; 200;
300 mg/L; dan kontrol. (A)= parasit Trichodina sp., (B)= parasit Dactylogyrus sp., dan (C)= parasit Gyrodactylus sp.
Figure 2. Ectoparasites infestation level on catfish with H 2 O 2 application doses 100; 200; 300 mg/L; and  control.  (A)=  Trichodina  sp.,  (B)=  Dactylogyrus  sp.,  and  (C)=  Gyrodactylus  sp.
menginfestasi  pada  akhir  pengamatan.  Infestasi Trichodina sp. memperlihatkan pola  yang naik turun khususnya pada perlakuan kontrol (Gambar 2A). Pada pengamatan ke-3 jumlah parasit yang menginfestasi sempat  menurun  dan  meningkat  kembali  hingga pengamatan ke-6. Mekanisme yang ditimbulkan akibat reaksi H 2 O 2 di dalam tubuh parasit yang berbeda-beda waktunya  menjadi  penyebabnya.  Kondisi  tersebut mengakibatkan  perbedaan  jumlah  parasit  Trichodina sp.  yang  ditemukan  pada  ikan  uji  saat  proses  sam- pling.  Perbedaan  siklus  hidup  parasit,  serta  sampel ikan  uji  yang  diperiksa  turut  memengaruhi  jumlah parasit yang menginfestasi. Meskipun, secara umum berdasarkan  rerata  jumlah  ektoparasit  pada  akhir pengamatan menunjukkan bahwa aplikasi H 2 O 2 mampu menekan  tingkat  infestasi  ketiga  jenis  ektoparasit
-3 1 5 9 13 17 21 25 29 33 1 2 3 4 5 6 R er at a ju m la h T ri ch od in a sp . A ve ra g e nu m be r of T ri ch od in a sp . ( in d .) Pengamatan (ke-) / Observation to 100 mg/L 200 mg/L 300 mg/L Kontrol (Control) -3 1 5 9 13 17 21 25 29 33 1 2 3 4 5 6 R er at a ju m la h D ac tyl og yr us sp . A ve ra g e nu m be r of D ac ty lo g yru s sp .( in d .) Pengamatan (ke-) / Observation to 100 mg/L 200 mg/L 300 mg/L Kontrol (Control) -3 1 5 9 13 17 21 25 29 33 1 2 3 4 5 6 R er at a ju m la h G yr od ac tyl us sp . A ve ra g e nu m be r of G yro da ct yl u s sp . ( in d .) Pengamatan (ke-) / Observation to 100 mg/L 200 mg/L 300 mg/L Kontrol (control) Kontrol (Control) 100 mg/L 200 mg/L 300 mg/L Kontrol (Control) 100 mg/L 200 mg/L 300 mg/L Kontrol (Control) 100 mg/L 200 mg/L 300 mg/L A B C
mg/L  telah  banyak  digunakan  untuk  mengatasi permasalahan  penyakit  pada  fasilitas  akuakultur, begitupula Athanassopoulou et al. (2009) menggunakan hidrogen  peroksida  untuk  mengobati  parasit  jenis isopoda  dan  copepod,  serta  sebagai  desinfektan dengan dosis 1.500 mg/L melalui perendaman selama 30 menit.
Infestasi  ektoparasit  menunjukkan  efektivitas aplikasi  H 2 O 2 yang  berbeda  pada  tiap  jenis  parasit (Gambar  4).  Kelompok  ikan  yang  direndam  H 2 O 2 dengan  dosis  100  mg/L,  200  mg/L,  dan  300  mg/L memiliki efektivitas yang tidak berbeda nyata (P>0,05) dalam  menekan  infestasi  parasit  Trichodina  sp. Efektivitas  seluruh  pelakuan  dosis  berbeda  nyata (P<0,05) terhadap kontrol, sedangkan efektivitas H 2 O 2 terhadap infestasi parasit Dactylogyrus sp. pada dosis 100 mg/L, 300 mg/L, dan kontrol tidak memperlihatkan perbedaan  yang  nyata  (P>0,05).  Tingkat  infestasi Dactylogyrus  sp.  pada  perlakuan  dosis  200  mg/L berbeda  nyata  (P<0,05)  dengan  perlakuan  lainnya, sementara terhadap infestasi parasit Gyrodacylus sp. tidak memperlihatkan perbedaan yang nyata (P>0,05) antar  perlakuan  dosis  H 2 O 2 .  Perbedaan  yang  nyata (P<0,05)  hanya  diperlihatkan  antara  kelompok pelakuan  dosis  100  mg/L  dengan  kelompok  tanpa pemberian  H 2 O 2 (kontrol).  Hasil  analisis  statistik menunjukkan  bahwa  perlakuan  pemberian  H 2 O 2 dengan dosis 300 mg/L memiliki efektivitas tertinggi
dalam  menekan  tingkat  infestasi  ketiga  jenis ektoparasit  (Trichodina  sp.,  Dactylogyrus  sp.,  dan Gyrodactylus sp.) dibandingkan perlakuan lainnya yaitu 100 mg/L, 200 mg/L, dan kontrol.

## Prevalensi  Ektoparasit
Semakin rendah prevalensi menunjukkan semakin efektifnya aplikasi bahan kimia dalam mengendalikan penyakit  parasitik  potensial.  Nilai  prevalensi ektoparasit yang diperoleh pada kelompok perlakuan aplikasi H 2 O 2 pada akhir penelitian berturut-turut dari yang terkecil hingga terbesar yaitu perlakuan 300 mg/ L,  200  mg/L,  dan 100  mg/L.  Kisaran  nilai  prevalensi pada  seluruh  perlakuan  pemberian  H 2 O 2 pada  awal pengamatan sebesar 62,5%-100% dan turun pada akhir penelitian  menjadi  0%-25%.  Prevalensi  pada  kontrol atau tanpa aplikasi H 2 O 2 pada akhir penelitian berada pada kisaran 0%-100%. Prevalensi parasit Dactylogyrus sp. pada akhir pengujian dengan perlakuan pemberian H 2 O 2 sebanyak 200 mg/L masih memperlihatkan nilai sebesar  25%.  Hal  tersebut  menunjukkan  bahwa pemberian H 2 O 2 dengan dosis 200 mg/L tidak efektif menekan infestasi parasit Dactylogyrus sp. Prevalensi terendah  diperoleh  perlakuan  aplikasi  H 2 O 2 dengan dosis  300  mg/L  untuk  jenis  parasit  Trichodina  sp., Dactylogyrus sp., dan Gyrodactylus sp. (Tabel 1). Nilai prevalensi tersebut menunjukkan bahwa aplikasi H 2 O 2 dosis  300  mg/L  memiliki  efektivitas  terbaik  dalam
Gambar 3. Infestasi parasit pada akhir pengujian H 2 O 2 dengan dosis 100 mg/L, 200 mg/L, 300 mg/L, dan kontrol.
Figure 3. Infestation of parasites at the end of the test with H 2 O 2 application at a dose of 100 mg/L, 200 mg/L, 300 mg/L, and control.
In ve st as i p ar as it (I nf es ta ti on o f p ar as it es ) Dosis 100 mg/L     Dosis 200 mg/L    Dosis 300 mg/L          Kontrol H 2 O 2 20.00 15.00 10.00 5.00 .00 -5.00
menekan prevalensi ektoparasit dibandingkan dengan aplikasi dosis 100 mg/L dan 200 mg/L maupun tanpa aplikasi.  Hasil  penelitian  Schmidt  et  al.  (2006)  juga menunjukkan bahwa pemberian hidrogen peroksida dosis  250-500  mg/L  selama  30-60  menit  melalui perendaman  mampu  mengendalikan  serangan ektoparasit.  Lebih  lanjut  Rach  et  al.  (2000)  dalam penelitiannya  juga  memperlihatkan  efektivitas penggunaan hidrogen peroksida dengan dosis 0-560 mg/L pada juvenil rainbow trout, Oncorhynchus mykiss berhasil  mengontrol  parasit  Ambiphrya  dan Gyrodactylus yang menginfestasi.
Berdasarkan hasil pengujian diperoleh dosis efektif aplikasi  H 2 O 2 yang  mampu  menekan  prevalensi ektoparasit pada ikan lele. Aplikasi H 2 O 2 sebanyak 300 mg/L  merupakan  dosis  yang  paling  efektif  dalam menurunkan  prevalensi  parasit  Trichodina  sp.,
Dactylogyrus  sp.,  dan  Gyrodactylus  sp.  dibandingkan dengan dosis 100 mg/L, 200 mg/L, dan kontrol.
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  tingkat infestasi  dan  nilai  prevalensi  parasit  Trichodina  sp., Dactylogyrus  sp.,  dan  Gyrodactylus  sp.  pada  akhir pengujian berhasil dikendalikan dengan aplikasi H 2 O 2 dibandingkan  tanpa  aplikasi  bahan  tersebut.  Hal tersebut mengindikasikan bahwa aplikasi H 2 O 2 efektif mengendalikan  infeksi  parasit  penyebab  penyakit parasitik  potensial  seperti  Trichodoniasis, Dactylogyriasis,  dan  Gyrodactyliasis  pada  ikan  lele. Menurut Hirazawa  et  al.  (2016), bahwa  pengobatan menggunakan  75  mg/L  hidrogen  peroksida  dengan perendaman selama 30 menit dapat menghilangkan penyakit  yang  disebabkan  parasit  cacing  jenis monogenea  yaitu  Benedenia  seriolae,  Neobenedenia girellae, dan  Zeuxapta  japonica  pada ikan  aji-aji  jalur
Gambar 4. Infestasi ektoparasit pada ikan lele dengan pengujian H 2 O 2 dosis 100; 200; 300 mg/L; dan kontrol. (A)= Trichodina sp., (B)= Dactylogyrus sp., dan (C)= Gyrodactylus sp.
Figure 4. Ectoparasites infestation on catfish with H 2 O 2 application doses 100; 200; 300 mg/L; and con- trol.  (A)=  Trichodina  sp.,  (B)=  Dactylogyrus  sp.,  and  (C)=  Gyrodactylus  sp.
Infestasi  Gyrodactylus  (Gyrodactylus  infestation) Infestasi  Dactylogyrus  (Dactylogyrus  infestation) Infestasi  Trichodina  (Trichodina  infestation) Kontrol 300 mg/L 200 mg/L 100 mg/L D o si s H 2 O 2 Kontrol 300 mg/L 200 mg/L 100 mg/L D o si s H 2 O 2 -5.00                    0.00                     5.00                   10.00                  15.00                               0.00           1.00           2.00           3.00           4.00           5.00           6.00 0.00           1.00           2.00           3.00           4.00           5.00           6.00 Kontrol 300 mg/L 200 mg/L 100 mg/L D o si s H 2 O 2 A B C
kuning  (Seriola  dumerili).  Lebih  lanjut  Barnes  et  al. (1998)  juga  mengaplikasikan  hidrogen  peroksida dengan  dosis  1.000  mg/L  untuk  mengontrol pertumbuhan jamur Saprolegnia spp. pada telur ikan salmon. Sementara Hany (2014) menyatakan bahwa aplikasi hidrogen peroksida memiliki potensi sebagai pencegah penyakit khususnya pada ikan-ikan kecil yang lebih  rentan  terhadap  infeksi  berbagai  macam penyakit, dikarenakan kemampuan dalam menurunkan nilai total bakteri. Begitupula pernyataan Avendano– Herrera  et  al.  (2006)  bahwa  hidrogen  peroksida dianjurkan sebagai desinfektan dalam budidaya ikan karena  dapat  mengontrol  bakteri  patogen Tenacibaculum  maritimum  pada  ikan  turbot (Scophthalmus  maximus).  Hal  tersebut  menunjukkan bahwa aplikasi hidrogen peroksida dapat digunakan pada aktivitas budidaya perikanan karena relatif aman bagi  lingkungan  dan  dapat  dijadikan  sebagai desinfektan (Rasowo et al., 2007) maupun anti jamur (Barnes et al., 1998).

## KESIMPULAN
Aplikasi hidrogen peroksida dengan dosis 300 mg/ L  efektif  menekan  infeksi  parasit  Trichodina  sp., Dactylogyrus sp., dan Gyrodactylus sp. pada  ikan lele Clarias  gariepinus.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penelitian  dibiayai  DIPA  Balai  Penelitian  dan Pengembangan  Budidaya  Air  Tawar  Bogor  (BPPBAT) Tahun 2016. Penulis mengucapkan terima kasih kepada Kepala BPPBAT, Tim Peneliti Kesehatan Ikan, dan Sdr. Johan  Afandi  yang  telah  membantu  selama  proses penelitian.

## DAFTAR  ACUAN
Athanassopoulou,  F.,  Pappas,  I.S.,  &  Bitchava,  K.
(2009). An  overview of the treatments  for para- sitic disease in Mediterranean aquaculture. Options Méditerranéennes, 86, 65-83.
Avendano-Herrera,  R.,  Magarinos,  B.,  Irgang,  R.,  & Toranzo,  A.E.  (2006).  Use  of  hydrogen  peroxide against  the  fish  pathogen  Tenacibaculum maritimumand  its  effect  on  infected  turbot (Scophthalmus maximus). Aquaculture, 257, 104-110. Barnes, M.E., Ewing, D.E., Cordes, R.J., & Young, G.L. (1998). Observations on hydrogen peroxide con- trol of Saprolegnia spp. during rainbow trout eggs incubation.  The  Progressive  Fish-Culturist,  60,  67- 70.
Christison,  K.W.,  Shinn,  A.P.,  &  van  As,  J.S.  (2005).
Gyrodactylus  thlapi  n.  sp.  (Monogenea)  from Pseudocrenilabrus  philander  philender  (Weber)
Tabel 1. Prevalensi  ikan  uji  terhadap  parasit  Trichodina  sp.,  Dactylogyrus  sp.,  dan  Gyrodactylus  sp. pada awal dan akhir pengujian dengan aplikasi hidrogen peroksida (H 2 O 2 ) pada tiap perlakuan.
Table 1. The prevalence of test fish against parasites Trichodina sp., Dactylogyrus sp., and Gyrodactylus sp. at the initial and end of the examination with the application of hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) in each treatment.
Awal (Initial ) Akhir (End ) 100 mg/L 100 50 200 mg/L 100 25 300 mg/L 100 0 Kontrol (Control ) 100 100 100 mg/L 62,5 0 200 mg/L 62,5 25 300 mg/L 62,5 0 Kontrol (Control ) 62,5 0 100 mg/L 87,5 25 200 mg/L 87,5 0 300 mg/L 87,5 0 Kontrol (Control ) 87,5 50 Perlakuan dosis H 2 O 2 Treatment of  H 2 O 2 dose Prevalensi Prevalence  (%)
Trichodina  sp.
Dactylogyrus  sp.
Gyrodactylus  sp.
Jenis parasit yang menginfeksi
The type of infecting parasite
(Cichlidae) in the Okawango Delta, Botswana. Sys- tematic Parasitology, 60, 165-173.
Direktorat  Kesehatan  Ikan  dan  Lingkungan [Dirkesling]. (2014). Buku saku pengendalian hama dan  penyakit  ikan.  Jakarta:  Direktorat  Jenderal Perikanan  Budidaya,  Kementerian  Kelautan  dan Perikanan, hlm. 216.
Halliwel, B., & Gutteridge, J.M. (2015). Free radicals in biology and medicine Fifth Edition. New York: Oxford University Press, 905 pp.
Hany,  R.C.R.  (2014).  Efektivitas  pemberian  hidrogen peroksida  terhadap  kualitas  media,  kelangsungan hidup dan pertumbuhan benih ikan patin Pangasius sp. Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor, 26 hlm. Hirazawa,  N., Tsubone,  S.,  &  Takano, R.  (2016).  An- thelmintic effects of 75 ppm hydrogen peroxide treatment on themonogeneans Benedenia seriolae, Neobenedenia girellae, and Zeuxapta japonica infect- ing the skin and gills of greater amberjack Seriola dumerili. Aquaculture, 450, 244-249.
Hoffman,  G.L.  (1967).  Parasites  of  North  American Freshwater Fishes Los Angeles: University of Cali- fornia Press, 543 pp.
Kabata, Z. (1985). Parasites and diseases of fish cul- tured in the tropics. London Philadelphia: Taylor and Francis Ltd, 318 pp.
Kayis, S., Ozcelep, T., Capkin, E., & Altinok, I. (2009). Protozoan and metazoan parasites of cultured fish in Turkey and their applied treatments. The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh, 61(2), 93-102.
Kudo,  R.R.  (1977).  Protozoology.  Illinois:  Charles  C Thomas Publisher, 1174 pp.
Lom, J., & Dyková, I. (1992). Protozoan parasites of fishes. Amsterdam: Elsevier Science Publisher B.V., 315 pp.
Olsen, O.W. (1986). Animal parasites: Their life cycles and ecology. New York: Dover Publications, Inc., 562 pp.
Prikrylová,  I.,  Blažek,  R.,  &  Vanhove,  M.P.M.  (2012). An  overview  of  the  Gyrodactylus  (Monogenea: Gyrodactylidae)  species  parasitizing  African  cat- fishes, and their morphological and molecular di- versity. Parasitology Research, 110, 1185-1200.
Rach,  J.J.,  Gaikowski,  M.P.,  &  Ramsay,  R.T.  (2000).
Efficacy of hydrogen peroxide to control parasitic infestations  on  hatchery-reared  fish.  Journal  of Aquatic Animal Health, 12, 267-273.
Rasowo,  J.,  Okoth,  O.Y.,  &  Ngungi,  C.C.  (2007).  Ef- fects  of  formaldehyde,  sodium  chloride,  potas- sium  permanganate,  and  hydrogen  peroxide  on hatch rate of African catfish Clarias gariepinus eggs. Aquaculture, 269, 271-277.
Reed, P., Floyd, R.F., Klinger, R.E., & Petty, D. (2012). Monogenean  parasites  of  fish.  University  of Florida: IFAS Extension, 110 pp.
Rubio-Godoy, M., Paladini, G., Freeman, M.A., García- Vásquez, A., & Shinn, A.P. (2012). Morphological and  molecular  characterisation  of  Gyrodactylus salmonis  (Platyhelminthes,  Monogenea)  isolates collected  in  Mexico  from  rainbow  trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). Veterinary Parasi- tology, 182, 289-300.
Schell,  S.C.  (1970).  How  to  know  the  trematodes. Iowa: WM.C. Brown Company Publishers, 355 pp. Schmidt,  G.D.,  &  Roberts,  L.S.  (1977).  Foundations of parasitology. Saint Louis: The C.V. Mosby Com- pany, 604 pp.
Schmidt,  L.J.,  Gaikowski,  M.P.,  &  Gingerich,  W.H. (2006). Environmental assessment for the use of hydrogen  peroxide  in  aquaculture  for  treating external fungal and bacterial diseases of cultured fish  and  fish  eggs.  La  Crosse,  Wisconsin:  USGS Report, 180 pp.
Singkoh, M.F.O. (2012). Tingkat kesukaan parasit pada ikan mas (Cyprinus carpio) yang dipelihara dalam wadah  jaring  apung  di  Desa  Eris,  Kabupaten Minahasa, Provinsi Sulawesi Utara. Jurnal Bioslogos, 2(2), 63-69.
Smith,  S.,  &  Schwarz,  M.  (2009).  Dealing  with trichodina and trichodina-like  species. Commer- cial Fish and Shellfish Technology Fact Sheet: Vir- ginia Cooperative Extension, 3 pp.
William, H.,  & Jones, A.  (1994). The  parasitic worm of fish. London: Taylor & Francis Ltd, 593 pp.