## FORMULASI DAN UJI AKTIVITAS GEL KOMBINASI EKSTRAK ETANOL DAUN
LIDAH BUAYA ( Aloe vera ) DAN DAUN KEMANGI ( Ocinum sanctum L. ) SEBAGAI

## ANTI JERAWAT TERHADAP BAKTERI Staphylococcus epidermidis
Angga Saputra Yasir 1* , Selvi Marcellia 2 , Lintang Buwana Wijaya 2 , Tika Rahayu Putri 1 1 Program Studi Teknologi Kosmetik, Jurusan Sains, Institut Teknologi Sumatera
2 Program Studi Farmasi, Fakultas Kedokteran, Universitas Malahayati *Email: angga.yasir@km.itera.ac.id
Received: 29/01/2021, Revised: 20/02/2021, Accepted: 25/02/2021, Published: 28/02/2021

## ABSTRAK
Jerawat  merupakan  penyakit  kulit  yang  disebabkan  oleh  bakteri  antara  lain  yaitu  bakteri Staphylococcus  epidermidis .  Lidah  buaya  ( Aloe  vera )  dan  daun  kemangi  ( Ocinum  sanctum L.) mengandung  saponin,  flavonoid,  dan  tanin  yang  mampu  menghambat  pertumbuhan  bakteri sehingga memiliki daya antibakteri. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui tingkat efektivitas dari kombinasi ekstrak lidah buaya ( Aloe vera ) dan daun kemangi  ( Ocinum sanctum L.) dalam bentuk  sediaan  gel  terhadap  bakteri Staphylococcus  epidermis. Metode  yang  digunakan  dalam ekstraksi  adalah  maserasi  menggunakan  etanol  96%  dengan  nilai  rendemen  yang  didapat  pada lidah buaya sebesar 22,32% dan pada daun kemangi sebesar 22,70%. Uji antibakteri menggunakan metode  difusi  cakram.  Perbandingan  ekstrak  (lidah  buaya  :  daun  kemangi)  dan  daya  hambat ekstrak terhadap bakteri Staphylococcus epidermis berturut-turut adalah 1:1, 16,82 mm; 1:2, 15,22 mm;  2:1,  14,59  mm;  1:0,  14,75  mm;  0:1,  15,21  mm.  Analisis  data  kombinasi  ekstrak menggunakan one way ANOVA menunjukan adanya perbedaan bermakna antar setiap kelompok perlakuan P>0,05. Selanjutnya uji sediaan gel dari kombinasi ekstrak 1:1, kontrol positif dan basis sediaan  gel  menghasilkan  zona  hambatberturut-turut  sebesar  20,05  mm;  31,37  mm;  9,17  mm. Analisis  data  gel  kombinasi  menggunakan  one  way  ANOVA  hasil  menunjukan  tidak  adanya perbedaan  bermakna  antar  setiap  kelompok  perlakuan  P<0,05.  Sediaan  gel  dengan  kombinasi ekstrak lidah buaya dan daun kemangi (1:1) memiliki efektivitas terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermis penyebab jerawat.
Kata Kunci : Jerawat,  Antibakteri, Lidah Buaya, Daun Kemangi, Staphylococcus epidermidis , Gel.

## ABSTRACT
Acne is a skin disease caused by bacteria, including Staphylococcus epidermidis. Aloe vera (Aloe vera) and basil leaves (Ocinum sanctum L.) contain saponins, flavonoids, and tannins which can inhibit bacterial growth so that they have antibacterial power. This study aimed to determine the antibacterial effectiveness  of  the combination of aloe vera extract  (Aloe vera) and basil  leaves (Ocinum sanctum L.) in gel dosage form against Staphylococcus epidermis bacteria. The method used in the extraction was maceration using 96% ethanol with a yield value obtained in aloe vera of 22.32% and 22.70% for basil leaves. Antibacterial test used was the disc diffusion method. The
Yasir et al. / Pharmacoscript, Volume 4, No, 1, Februari 2021, 62-77
Safitri.,et al./Pharmacoscript, Volume 1, No. 2, Februari 2019, 1-12
Yasir et al.;Formulasi dan Uji.....Pharmacoscript Volume 4 No. 1, Februari 2021
ratio  of  the  extract  (aloe  vera:  basil  leaves)  and  the  inhibition  of  the  extract  against Staphylococcus epidermis bacteria are 1:1, 16.82 mm; 1:2, 15.22 mm; 2:1, 14.59 mm; 1:0, 14.75 mm; 0:1, 15.21 mm. Analysis of the combination of extract data using one way ANOVA showed a significant difference between each treatment group P> 0.05. Furthermore, the gel dosage test from a combination of 1:1extract, positive control and gel preparation base produce an inhibition zone 20.05 mm; 31.37 mm; 9.17 mm respectively. Analysis of combination gel data using one way ANOVA results show that there is no significant difference between each treatment group P <0.05. Gel  preparations  with  a  combination  of  aloe  vera  extract  and  basil  leaves  (1:  1)  have  an effectiveness against the growth of the Staphylococcus epidermis bacteria causing acne.
Keywords : Acne, Antibacterial, Aloe Vera, Basil Leaves, Staphylococcus epidermidis, Gel.

## PENDAHULUAN
Kulit melindungi manusia dari serangan  mikroorganisme,  dengan  adanya tabir lemak di atas kulit yang diperoleh dari kelenjar lemak dan sedikit kelenjar keringat dari kulit, serta terdapat adanya lapisan kulit bagian  luar  yang  berfungsi  sebagai  sawar kulit. Akan tetapi pada kondisi tertentu kulit tidak  mampu  melindungi  manusia  dari bakteri  yang  memicu  terjadinya  jerawat (Wastiaatmadja, 2007).
Jerawat  ( acne )  merupakan  sebuah penyakit  kulit  akibat  peradangan  kelenjar polisebasea ditandai adanya komedo, papul, pustul,  nodus  dan  kista  pada  tempat predileksi  (muka  dan  bahu  bagian  atas). Jerawat  sering  terjadi  pada  remaja  yang sedang mengalami tanda-tanda awal pubertas (Graham, 2011).
Sediaan  anti  jerawat  yang  ada dipasaran  yang  mengandung  bahan  kimia (sintesis) memiliki efek samping lebih besar dibandingkan  dengan  bahan  dari  alam (Wolverton et al .,  2015). Efek samping yang
ditimbulkan  sediaan  anti  jerawat  sintesis yaitu reaksi alergi diakibatkan oleh antibiotik yang melibatkan sistem imun tubuh menjadi hospes dan reaksi hipersensitivitas (Zouboulis, 2012).
Daun  kemangi  memiliki  kandungan kimia  seperti  saponin,  flavonoid,  polifenol dan tanin  yang diduga mampu menghambat pertumbuhan  bakteri  sehingga  ekstrak  daun kemangi diindikasikan memiliki daya antimikroba (Rahmawati, 2010).
Lidah  buaya  ( Aloe  vera )  memiliki kandungan  senyawa  kimia  antara  lain saponin,  flavonoid,  fenol,  serta  tanin  yang mempunyai  kemampuan  yang  bersifat antiseptik dan antimikroba (Hariana, 2008).
Gel  merupakan sediaan topikal  yang mudah digunakan terhadap kulit serta bentuk fisik yang menarik dibanding bentuk sediaan topikal lainnya (Wyatt et al ., 2001). Sediaan bentuk  gel  lebih  baik  digunakan  pada pengobatan jerawat dibanding bentuk sediaan  krin  karena  sediaan  gel  dengan pelarut  yang  polar  lebih  mudah  dibersihkan
dari permukaan kulit setelah pemakaian dan tidak  mengandung  minyak  yang  dapat meningkatkan keparahan jerawat (Sasanti et al ., 2012).
Basis  gel carbopol merupakan  basis dengan  yang  dalam  pembuatan  gel  akan menghasilkan  sediaan  gel  yang  transparan dengan  sifat  alir  pseudoplastik.  Konsentrasi carbopol yang biasa dipakai untuk membuat gel adalah antara 0,3-1% (Lund, 1994).
Berdasarkan  latar  belakang  masalah tersebut  peneliti  tertarik  untuk  mengetahui aktivitas  antimikroba  kombinasi  ekstrak lidah  buaya  dan  daun  kemangi  terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis sehingga menjadi sebuah alternatif pembuatan gel anti jerawat  dari  bahan  alam  yang  dapat meningkatkan  pemanfaatan  lidah  buaya ( Aloe  vera )  dan  daun  kemangi  ( Ocimum sanctum L.)  untuk  mengatasi  masalah  kulit khususnya jerawat.

## METODE PENELITIAN
Alat dan Bahan
Alat yang digunakan yaitu Timbangan  Analitik,  Magnetik  Stirrer, Inkubator,  pH  meter  tipe  510,  Viscometer Brookfield (tipe RV), Oven, pH meter Metler Toledo  , Lemari Pendingin, Tabung Pereaksi,  Otoklaf,  Mikropipet  20-200  dan 100-1000.
Bahan  yang  digunakan  yaitu  ekstrak lidah  buaya  ( Aloe  vera ),  ekstrak  daun kemangi ( Ocimum sanctum
L.), Staphylococcus epidermis FNCC-0048, MHA  ( Mueller  Hilton  Agar ),  Carbopol, darah domba, Trietanolamin (TEA), Propilenglikol,  Metyl  Paraben,  Natrium Metabisulfit,  Aquadest,  dan  sediaan  gel Klindamisin (Medi-klin  ).
Jalannya Penelitian
1. Ekstraksi Sampel
Ekstraksi sampel dengan
menggunakan  metode  maserasi.  Serbuk simplisia  lidah  buaya  dan  daun  kemangidi timbang  sebanyak  650  gramkemudian dimaserasi, serbuk di masukan dalam wadah gelap  di  tambah  dengan  pelarut  etanol  96% sampai  teredam  sempurna,  lalu  didiamkan selama 3 hari  dengan sekali di aduk, setiap 24 jam di lakukan pergantian pelarut sampai larutan  bening,    kemudian  di  saring  dengan kertas saring sehingga di peroleh di  tambah dengan  etanol    96%  untuk  di  maserasi kembali sampai tersari sempurna, kemudian maserat  dipekatkan  dengan  menggunakan rotary evaporator pada temparatur 50 0 C.

## 2. Uji Bebas Etanol
Uji  bebas  etanol  dilakukan  dengan cara 1 ml asam asetat glasial dan 1 ml asam sulfat  pekat  ditambahkan  ke  dalam  sampel ekstrak  kemudian  dihomogenkan.  Tabung
disumbat  dengan  kapas  lalu  dipanaskan. Maserat  dinyatakan  bebas  etanol  jika  tidak tercium  bau  ester.  Uji  bebas  etanol  juga dikonfirmasi dengan cara 2 tetes asam sulfat pekat dan 1 ml kalium dikromat ditambahkan ke  dalam  sampel  ekstrak,  jika  terjadi perubahan  warna  jingga  menjadi  hijau kebiruan  maka  sampel  dinyatakan  bebas etanol (Mario, 2016).
3. Skrining Fitokimia

## 3.1 Uji flavonoid
Ekstrak kental 1 mL lidah buaya dan daun  kemangi  masing-masing  dimasukkan ke dalam tabung reaksi. Ditambahkan serbuk Magnesium  2  mg  dan  3  tetes  HCl  pekat. Terbentuknya  warna    kuning  atau  jingga pada  larutan  menunjukan  adanya  flavonoid (Harborne, 2008).

## 3.2 Uji saponin
Ekstrak  kental  sebanyak  10  mL dikocok  vertical  di  dalam  tabung  reaksi selama 10 detik  kemudian dibiarkan selama 10  detik.  Saponin  ditunjukan  dengan terbentuknya  busa  setinggi  1-10  cm  yang stabil  tidak  kurang  dari  10  menit.  Pada penambahan 1 tetes HCl 2N busa tidak hilang (Depkes RI, 1995).

## 3.3 Uji Polifenol dan tanin
Ekstrak kental 1 mL lidah buaya dan daun  kemangi  masing-masing  dimasukkan ke  dalam  tabung  reaksi.  Tambahkan
beberapa  tetes    larutan    besi    (III)    klorida 10%.  Terbentuknya  warna    biru    tua    atau hitam    kehijauan  menunjukkan  adanya senyawa tanin dan fenol (Robinson, 1995).

## 3.4 Sterilisasi Alat
Alat-alat  disterilisasi  dalam  autoklaf dibungkus dengan kertas dan dimasukkan ke dalam  autoklaf  pada  suhu  121 o C  dengan tekanan  15  atm  selama  15  menit.  Alat-alat yang  tidak  dapat  disterilisasi  dengan menggunakan  autoklaf  disterilisasi  alkohol 70%.
4. Pengujian  Zona  Hambat  Kombinasi
Ekstrak  dengan  Metode  Cakram pada Bakteri Staphylococcus
epidermidis
Media Blood  Agar  Plate (BAP) sebanyak  10  mL  dicampur  dengan  20  μL suspensi  bakteri,  selanjutnya  dituang  secara aseptik  kedalam  cawan  petri  steril  dan dibiarkan  hingga  membeku.  Selanjutnya paper  disk diteteskan  sebanyak  20  μL konsentrasi  ekstrak  2%  b/v  dengan  tiga perbandingan  ekstrak  lidah  buaya  dan  daun kemangi yaitu 1:1, 1:2, 2:1 serta ekstrak lidah buaya  tunggal  dan  ekstrak  daun  kemangi tunggal.  Biarkan  hingga  kering  dan  kontrol diletakkan diatas permukaan medium secara aseptik,  diinkubasi  pada  suhu  37 o C  selama 2x24  jam.  Diamati  zona  hambat  yang terbentuk (Dwi, 2018)

## Pharmacoscript Volume 4 No. 1 Februari 2021
Tabel 1. Formula Sediaan Gel
Bahan Formula (%) F1 F2 F3 F4 F5 K- K+ Ekstrak Kental Lidah Buaya 1 0.67 1.33 2 - - Ekstrak Daun Kemangi 1 1.33 0.67 - 2 - Gel Mediklin Carbopol 1,75 1,75 1,75 1,75 1,75 1,75 1,75 TEA 1,75 1,75 1,75 1,75 1,75 1,75 1,75 Propilen Glikol 10,0 10,0 10,0 10,0 10,0 10,0 10,0 Metil Paraben 0,18 0,18 0,18 0,18 0,18 0,18 0,18 Natrium Metabisulfit 0,40 0,40 0,40 0,40 0,40 0,40 0,40 Aquadest hingga 100 100 100 100 100 100 100 Keterangan : F1 : Kombinasi Ekstrak Lidah Buaya dan Daun Kemangi 1:1 2% F2
: Kombinasi Ekstrak Lidah Buaya dan Daun Kemangi 1:2 2%
F3
: Kombinasi Ekstrak Lidah Buaya dan Daun Kemangi 2:1 2%
F4
: Ekstrak Lidah Buaya Tunggal 2% F5 : Ekstrak Daun Kemangi Tunggal 2%
K+ : Kontrol Positif K- : Kontrol Negatif

## 5. Pembuatan Formulasi Gel
Carbopol  yang  sudah  dikembangkan terlebih  dahulu  dicampur  dengan  aquadest, digerus  sampai  homogen  lalu  didiamkan kurang lebih semalaman.
Sediaan
dinetralkan dengan penambahan TEA sedikit demi sedikit sambil homogenkan dengan magnetic  stirrer sampai  terbentuk basis  gel  (massa  1).  Metil  Paraben  dan Natrium  metabisulfit  dilarutkan  dengan sebagian  propilen  glikol  (massa  2),  lalu campurkan  massa  1  dan  massa  2  dengan magnetic stirrer hingga homogen (massa 3).
Kemudian  ke  dalam  massa  3  tersebut ditambahkan  sisa  air  suling,  dihomogenkan dengan  menggunakan magnetic  stirrer
dengan  kecepatan  dan  waktu  pengadukan yang optimal.
6. Evaluasi Gel

## 6.1 Pemeriksaan Daya Sebar
Gel  kombinasi  ekstrak  etanol  daun kemangi dan lidah buaya ditimbang 0,5 gram diletakkan  ditengah  kaca  bulat,  ditimbang dahulu  kaca  yang  satunya,  letakkan  kaca tersebut  diatas  massa  gel  dan  dibiarkan  1 menit.

## 6.2 Uji Daya Lekat
Gel  kombinasi  ekstrak  etanol  daun kemangi dan lidah buaya 0,2 gram diletakkan diantara object  glass pada  alat  dan  dilepas beban seberat 80 gram, waktu sampai kedua object glass terlepas dicatat.

## 6.3 Pemeriksaan Organoleptik
Gel  kombinasi  ekstrak  etanol  daun kemangi  dan  lidah  buaya  diamati  bentuk, warna, dan baunya.

## 6.4 Pemeriksaan pH
Pemeriksaan  pH  menggunakan  pH meter  yang  telah  dikalibrasi  sebelumnya. Elektroda  pH  meter  dicelupkan  kedalam sediaan gel kemudian pengukuran dilakukan sebanyak 3 kali pengulangan agar memperoleh hasil yang akurat.
6.5 Pemeriksaan Homogenitas
Dilakukan dengan mengoleskan sediaan  pada  kaca  transparan,  sediaan  uji harus menunjukkan susunan yang homogen.

## 6.6 Uji Iritasi
Hewan  uji  yang  digunakkan  yaitu kelinci. Uji ini dilakukkan dengan mengoleskan  sediaan  kepunggung  kelinci dengan  pengamatan  24  jam,  48  jam  dan  72 jam.  Kelinci  yang  dipilih  memiliki  kriteria sehat dan berbulu putih dengan jenis kelamin acak (jantan dan betina).

## 7. Pengujian Daya Hambat Sediaan Gel Kombinasi Ekstrak
Sebanyak  1  ose  suspensi  bakteri
Staphylococcus  epidermidis di  oleskan dalam  media Blood  Agar  Plate (BAP).
Kemudiam masukkan gel kombinasi ekstrak lidah buaya dan daun kemangi menggunakan mikropipet  ke  dalam  cakram  disk  di  media
Blood  Agar  Plate (BAP).  Diinkubasi  ke dalam  inkubator  pada  suhu  37 o C  selama  24 jam.  Amati  dan  ukur  diameter  zona  terang ( Clear  zone )  yan  terbentuk  disekitar  lubang dengan  menggunakan  penggaris  (Fifendy, 2017).

## Analisis Data
1. Data ekstrak yangdiperoleh dari penelitian akan di analisis menggunakan uji  statistik  yaitu  uji one  way ANOVA pada  tingkat  kepercayaan  95%,  dan dilanjutkan  dengan  uji Post  Hoct LSD untuk  melihat  perbedaan  bermakna efektivitas  kombinasi  ekstrak  lidah buaya  dan  daun  kemangi  terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis
2. Data gel kombinasi  yang diperoleh dari penelitian akan di analisis menggunakan uji  statistik  yaitu  uji one  way ANOVA pada  tingkat  kepercayaan  95%,  dan dilanjutkan  dengan  uji Post  Hoct LSD untuk  melihat  perbedaan  bermakna efektivitas  kombinasi  gel  antijerawat ekstrak  lidah  buaya  dan  daun  kemangi terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis .

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## 1. Ekstraksi
Hasil  ekstraksi  lidah  buaya  ( Aloe vera )  didapat  hasil  rendemen  ekstrak

## Pharmacoscript Volume 4 No. 1 Februari 2021
sebesar22,32%  dan daun kemangi  ( Ocimum sanctum L )   didapat  hasil rendemen  ekstrak sebanyak 22,70%. Metode yang digunakkan yaitu  maserasikarena  kelebihannya  dalam pengerjaan  mudah,  alat  yang  dibutuhkan sederhana,mudah  dengan  cara  merendam
simplisia  dalam  pelarut,  meminimalkan terjadinya  kerusakan  senyawa  dan  cocok untuk  bahan  yang  tidak  tahan  pemanasan. Alasan  penggunaan  pelarut  etanol  96% karena  memiliki  kepolaran  yang  sama dengan senyawa yang akan diambil.
Tabel 2. Hasil Ekstraksi Lidah Buaya ( Aloe vera ) dan Daun Kemangi ( Ocimum sanctum L.)
Ekstrak Bobot Basah (gram) Bobot Kering (gram) Pelarut (mL) Persen Susut Pengeringan (%) Bobot Ekstrak (gram) Rendemen (%) Lidah Buaya 650 250 500 54,5 55,8 22,32 Daun Kemangi 650 375 500 42,3 85,3 22,70
2. Uji Bebas Etanol Tabel 3. Uji Bebas Etanol Ekstrak Hasil Keterangan Lidah Buaya Larutan Berwarna Hijau dan Tidak Berbau Ester + Daun Kemangi Larutan Berwarna Hijau dan Tidak Berbau Ester + Keterangan : + : Bebas Etanol -
: Mengandung Etanol
Ekstrak yang diperoleh dalam penelitian ini dilakukannya uji bebas etanol. Uji bebas etanol dilakukan untuk membebaskan  ekstrak  dari  etanol  sehingga didapatkan  ekstrak  yang  murni  tanpa  ada kontaminasi.  Etanol  dapat  bersifat  sebagai antibakteri  dan  antifungi  sehingga  akan menimbulkan ketidak akuratan pada perlakuan sampel.

## 3. Skrining Fitokimia
Hasil  uji  skrining  fitokimia  ekstrak lidah  ( Aloe  vera )  menggunakan  pelarut etanol  96%  menunjukkan  bahwa  sampel
tersebut positif memiliki kandungan flavonoid, fenolik, tanin dan saponin. Tetapi negatif pada senyawa alkaloid.
Tabel  4. Skrining  Fitokimia  Lidah  Buaya ( Aloe vera ) Senyawa Hasil Ket. Flavonoid Larutan jingga kuning (+) Alkaloid Larutan hijau kuning, endapan (-) Fenolik Larutan hijau kehitaman (+) Tanin Larutan hijau (+) Saponin Larutan terbentuk busa (+)
Keterangan :
+
: Positif
- : Negatif
Hasil  uji  skrining  fitokimia  ekstrak daun  kemangi  menggunakan  pelarut  etanol 96%  menunjukkan  bahwa  sampel  tersebut positif  memiliki  kandungan  flavonoid, alkaloid, fenolik, tanin dan saponin.
Tabel 5. Skrining Fitokimia Daun
Kemangi( Ocimum sanctum L ) Senyawa Hasil Ket. Flavonoid Larutan jingga kuning (+) Alkaloid Larutan hijau kuning, endapan (+) Fenolik Larutan hijau kehitaman (+) Tanin Larutan hijau (+) Saponin Larutan terbentuk busa (+) Keterangan : + : Positif - : Negatif

## 4. Uji Daya Hambat Ekstrak
Uji aktivitas bakteri terhadap Staphylococcus epidermidis dilakukan penentuan  uji  daya  hambat  ekstrak  lidah buaya  dan  daun  kemangi  pada  konsentrasi 2%  tunggal  dan  dengan  masing-masing perbandingan  1:1,  1:2,  dan  2:1.  Hasil  yang didapat  pada  ekstrak  lidah  buaya  rata-rata sebesar  14,75  mm,  pada  daun  kemangi tunggal didapat rata-rata sebesar 15,21. Pada
perbandingan  1:1  ekstrak  lidah  buaya  dan daun  kemangi  memiliki  zona  hambat  atau zona bening rata-rata yang paling besar yaitu 16,82 mm. Pada perbandingan 1:2 mendapat rata-rata zona hambat sebesar 15,22 mm, dan perbandingan  2:1  mendapat  rata-rata  zona hambat sebesar 14,59 mm. Sedangkan pada kontrol positif dengan menggunakan klindamisin  menunjukkan  rata-rata  zona hambat sebesar 30,24 mm  dan pada kontrol negatif  dengan  menggunakanaquades  steril menunjukkan  tidak  adanya  zona  hambat yang  terbentuk,  ini  terjadi  karena  aquades merupakan  senyawa  netral  yang  tidak mengandung zat-zat yang dapat menghambat pertumbuhan bakteri.
Pada penelitian ini terdapat kekurangan  ketika  melakukkan  uji  daya hambat  kontrol  positif  terhadap  bakteri staphylococcus  epidermidis yang  tidak melakukan  perhitungan  konsentrasi  dari klindamisin dalam  pengenceran  untuk pengujian daya hambat.
Pada  uji  parametik One  Way ANOVA  dengan  nilai  Sig.  P<  0,05  yang berarti ekstrak tunggal dan kombinasi ekstrak lidah  buaya  dan  daun  kemangi  efektif menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis .

## Pharmacoscript Volume 4 No. 1 Februari 2021

## Tabel 6. Uji Daya Hambat Ekstrak& ANOVA
Konsentrasi Diameter rata-rata zona hambat(mm) Pengulangan Rerata diameter daerah hambatan(mm) ANOVA I II III F1 16,82 16,86 16,80 16,82 ±0,03
0,0000058 F2 15,20 15,24 15,23 15,22 ±0,02 F3 14,56 14,62 14,60 14,59 ±0,03 F4 14,75 14,78 14,74 14,75 ±0,02 F5 15,22 15,24 15,18 15,21±0,03 F6 30,25 30,23 30,24 30,24 ± 0,01 F7 0 0 0 0 Keterangan : F1 : Kombinasi Ekstrak Lidah Buaya dan Daun Kemangi 1:1 2% F2
: Kombinasi Ekstrak Lidah Buaya dan Daun Kemangi 1:2 2%
F3
: Kombinasi Ekstrak Lidah Buaya dan Daun Kemangi 2:1 2%
F4
: Ekstrak Lidah Buaya Tunggal 2% F5 : Ekstrak Daun Kemangi Tunggal 2%
K+ : Kontrol Positif K- : Kontrol Negatif
Uji daya hambat bakteri ekstrak tunggal cawan 1 Uji daya hambat bakteri ekstrak tunggal cawan 2 Uji daya hambat bakteri ekstrak tunggal cawan 3
Gambar  1.1 .  Uji  Daya  Hambat  bakteri Staphylococcus  epidermidis Ekstrak Tunggal
Uji daya hambat bakteri ekstrak kombinasi cawan 1 Uji daya hambat bakteri ekstrak kombinasi cawan 2 Uji daya hambat bakteri ekstrak kombinasi cawan 3 Gambar  1.2 .  Uji  Daya  Hambat  bakteri Staphylococcus  epidermidis Ekstrak Kombinasi
Daya Hambat Cawan 1 Daya Hambat Cawan 2 Daya Hambat Cawan 3
Gambar 2 . Uji Daya Hambat Bakteri Staphylococcus epidermidis K+ (Klindamisin) dan K- (Aquadest).
5. Evaluasi Gel
Tabel 7. Evaluasi Gel
Formula Organoleptis pH Homogenita s Daya Sebar (cm) Daya Lekat (detik) Warna Bau Bentuk F1 Kuning Keemasan Khas Lidah Buaya Semi Padat 6 Homogen 5,7 ± 0.2 9,28 ±0.34 K- Bening Khas Basis Semi Padat 5 Homogen 5,5±0.21  10,35±0.45 Keterangan : F1 : Gel Kombinasi Ekstrak 2% 1:1
K- : Kontrol Negatif
Uji organoleptisdidapatkan hasil formulasi  ekstrak  2%  yaitu  dengan  bentuk semi  padat,  bau  yang  khas  lidah  buaya  dan daun kemangi serta warna kuning keemasan. Hasil  formulasi  gel  kontrol  negatif  yaitu dengan  bentuk  semi  padat,  bau  yang  khas basis gel serta warna bening.  Pengamatan uji pH pada formula gel ekstrak 2% memiliki pH 6  dan  pH  kontrol  negatif  memiliki  pH  5. Semua formulasi memenuhi persyaratan pH hal  ini  didasarkan  sediaan  masuk  dalam range pH 4-7 sesuai  dengan pH kulit.  Nilai
pH  yang  terlalu  asam  dapat  menyebabkan iritasi  pada  kulit  dan  pH  yang  terlalu  basa dapat  menyebabkan  kulit  menjadi  kering. (Tranggono, 2014).
Hasil  pengamatan  uji  daya  sebar formulasi gel 2% sebesar 5,7 cm sedangkan gel  kontrol  negatif  memiliki  daya  sebar sebesar 5,5 cm. Hasil memenuhi persyaratan uji  daya  sebar  hal  ini  didasarkan  dengan persyaratan uji daya sebar  yaitu sebesar 5-7 cm.

## Pharmacoscript Volume 4 No. 1 Februari 2021
Pengamatan  uji  homogenitas  dengan hasil  setiap  formula  tidak  terdapat  partikel padat,  sediaan  tercampur  sempurna  yang ditandai  tidak  adanya  partikel  padat  berarti semua  formulasi  memenuhi  persyaratan  uji homogenitas  hal  ini  didasarkan  dengan persyaratan uji homogenitas.
Hasil  uji  daya  lekat  pada  formulasi gel  gel  2%  ekstrak  kombinasi  lidah  buaya dan  daun  kemangi  1:1  terlepas  pada  waktu 9,28  detik  sedangkan  gel  kontrol  negatif terlepas  pada  waktu  10,35  detik.  Hasil memenuhi persyaratan uji daya lekat, hal ini didasarkan  dengan  persyaratan  uji  lekat  gel terlepas maksimum 11,8 detik

## 6. Uji Daya Hambat Sediaan Gel & ANOVA
Tabel 8. Uji Daya Hambat Sediaan Gel & ANOVA
Variabe l Diameter rata-rata zona hambat (mm) Pengulangan Rerata diameter daerah hambatan (mm) ANOVA I II III F1 20,03 20,05 20,08 20,05 ± 0,025 0,0000038 K+ 31,40 31,43 31,37 31,40 ± 0,03 K- 9,12 9,20 9,17 9,16 ± 0,04 Keterangan : F1 : Formulasi GelKombinasi Ekstrak 2% 1:1
K+ : Kontrol Positif K- : Kontrol Negatif
Daya Hambat Cawan 1 Daya Hambat Cawan 2 Daya Hambat Cawan 3
Gambar 3 . Uji Daya Hambat Sediaan Gel
Uji daya hambat antibakteri terhadap bakteri Staphylococcus  epidermidis dengan sediaan  gel  ekstrak  lidah  buaya  dan  daun kemangi dilakukan terhadap tiga formula: FI (formula  mengandung  ekstrak  2%  1:1),K+ (kontrol  positif)  dan  K-  (kontrol  negatif).
Pengujian  dilakukan  pengulangan  sebanyak tiga  kali  ( triplo ),  yang  bertujuan  agar  data yang  didapatkan  lebih  akurat.  Media  agar yang  digunakan  adalah Blood  Agar  Plate (BAP),  dengan  metode  disk  cakram  ( disc diffusion method ).
Hasil penelitian menunjukkan bahwa konsentrasi  uji  2%  memiliki  aktivitas antibakteri  terhadap  bakteri Staphylococcus epidermidis yang  didapatkan  rata-rata  zona hambat  yaitu  20,05  mm  yang  dapat  dilihat pada tabel 5. Pada konsentrasi 2% formulasi memenuhi  standar  kuat  (16-20  mm) (Greenwood, 1995).
Pada kontrol negatif yaitu gel dengan konsentrasi  ekstrak  0%  menunjukan  adanya zona  hambat  sebesar  9,16  mm,  hal  itu disebabkan  karena  formula  mengandung pengawet.  Pengawet  yang digunakkan  yaitu methylparaben (nipagin) dengan konsentrasi yang diperbolehkkan sebesar 0,02% merupakan  konsentrasi  terendah  dalam penggunaan sebagai pengawet (Tranggono et al .,  2014).  Daya  hambat  2000  (mg/mL) setara  0,2%  dari  methylparaben  dalam larutan air mampu menghambat pertumbuhan Staphylococcus  epidermidis (Haag, 1984). Pada konsentrasi penelitian ini kadar metil paraben yang digunakan sebesar 0,4%,  hal  tersebut  menyababkan  sediaan dengan  gel  kontrol  negatif  memiliki  zona hambat.  Metil  paraben  dapat  meningkatkan aktivitas  antimikroba  disebabkan  karena panjangnya rantai alkil (Rowe, 2006).
Kontrol  positif  yang  digunakan sebagai  pembanding  yaitu  klindamisin
karena  klindamisin  utamanya  digunakan dalam  pengobatan  infeksi  yang  disebabkan oleh  bakteri  aerob  seperti Staphylococcus epidermidis. Klindamisin juga sangat efektif terhadap bakteri gram positif. Pada penelitian ini  klindamisin  yang  digunakan  yaitu klindamisin  gel  1%  ( Medi-klin  ).  Hasil penelitian  menunjukkan  bahwa  klindamisin gel  1%    dapat  menghambat  pertumbuhan bakteri  dengan diameter  zona sebesar 31,40 mm terhadap bakteri Staphylococcus epidermidis. Hal  ini  membuktikan  bahwa klindamisin  merupakan  antibiotik  yang tergolong kuat dalam menghambat Staphylococcus  epidermidis.  kokus gram positif  seperti  golongan Streptococcus  dan Staphylococcus. Mekanisme  klindamisin sebagai  antibakteri  bekerja  dengan  cara menghambat  reproduksi  atau  pertumbuhan dari  bakteri  yaitu  dengan  penghambatan sintesa protein bakteri (Tiran et al ., 2014).
Pada  uji  parametik One  Way ANOVA  dengan  nilai  Sig.  P<  0,05  yang berarti gel kombinasi ekstrak lidah buaya dan daun kemangi efektif menghambat pertumbuhan bakteri
Staphylococcus epidermidis .

## 7. Uji Iritasi Sediaan  Gel

## Tabel 9. Hasil Pengamatan Uji Iritasi
Perlakuan Reaksi Indeks Iritasi Primer Kesimpulan Eritema Udema F1 0 0 0 Tidak Mengiritasi K- 0 0 Keterangan : F1 : Formulasi Menggunakan Gel Kombinasi Ekstrak 2% 1:1 K- : Kontrol Negatif Uji iritasi gel pada kelinci 1 dan 2 Uji iritasi pada 0 jam Uji iritasi pada 24 jam Uji iritasi pada 48 jam Uji iritasi pada 72 jam Gambar 4 . Uji Iritasi Sediaan Gel Keterangan: 1. Lingkaran hitam : Gel 2% kombinasi ekstrak lidah buaya dan daun kemangi 2. Lingkaran merah : Kontrol negatif
Uji iritasi pada penelitian ini merujuk pada  pedoman  dari  BPOM  2014  No.  875 tentang iritasi akut dermal. Uji iritasi sediaan gel kombinasi ekstrak lidah buaya dan daun kemangi ini menggunkan hewan uji kelinci. Reaksi iritasi positif ditandai dengan adanya
ruam  kemerahan,  atau  bengkak  pada  kulit yang diberi perlakuan selama tiga hari. Hasil uji  iritasi  sediaan  gel  kombinasi  ekstrak ekstrak  lidah  buaya  dan  daun  kemangiyang diujikan pada kelinci menunjukan hasil tidak adanya  iritasi  dengan  skor  pembentukan
eritema  0  dan  skor  pembentukan  udema  0. Hal ini dapat disebabkan karena pH sediaan yang  telah  memenuhi  persyaratan  di  kulit yaitu 4,5-6,5serta ekstrak dan eksipien yang digunakan tidak dapat memicu reaksi iritasi.

## KESIMPULAN
Ekstrak  2%  kombinasi  ekstrak  lidah buaya  ( Aloe  vera )  dan  daun  kemangi ( Ocimum  sanctum L.)  terhadap  bakteri
Staphylococcus  epidermidis yang  memiliki tingkat keefektivan tertinggi pada perbandingan 1:1 dengan zona hambat rata- rata  sebesar  16,82  mm.  Pada  uji One  Way ANOVA  didapatkan  nilai  Sig.  P<0,05  yang berarti  ekstrak  efektif    dalam  menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis
Sediaan  gel  2%  kombinasi  ekstrak lidah  buaya  ( Aloe  vera )  dan  daun  kemangi ( Ocimum sanctum L.) memenuhi persyaratan dengan  pH  6,  daya  sebar  5,7,  daya  lekat terlepas  pada  waktu  9,28  detik,  gel  yang homogen dan mendapat indeks iritasi sebesar 0  yang  artinya  tidak  mengiritasi.  Semua evaluasi tersebut memenuhi persyaratan gel.
Uji  Daya  Hambat  sediaan  gel  2% kombinasi  ekstrak  lidah  buaya  ( Aloe  vera ) dan daun kemangi ( Ocimum sanctum L.) 1:1 dengan zona hambat rata-rata sebesar 20,05 mm. Pada uji One Way ANOVA didapatkan
nilai  Sig.  P<0,05  yang  berarti  sediaan  gel kombinasi dari ekstrak lidah buaya dan daun kemangi  efektif  menghambat  pertumbuhan bakteri Staphylococcus epidermidis .

## DAFTAR PUSTAKA
CLSI.    (2012). Performance  Standards  for Antimicrobial  Susceptibility  Testing; Twenty-Second
Informational Supplement . Departemen
Kesehatan RI. (1995). Farmakope  Indonesia, Edisi  IV.
Jakarta: Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Hal. 551, 713. Dwi. (2018). Pola Pertumbuhan
Staphylococcus  aureus Pada  Media Agar Darah Manusia Golongan O, AB Dan  Darah  Domba  Sebagai  Kontrol. Jurnal Ilmu dan Teknologi Kesehatan . Vol. 3 Hal. 191-200.
Fifendy,  M.  (2017). Mikrobiologi .  Depok:
Kencana.
Graham, B. R., Bourke,  J., dan Cunliffe, T.
(2011). Akne.  Dalam:  Dermatologi Dasar  untuk  Praktik  Klinik. Jakarta: EGC Medical Publisher.
Greenwood. (1995). Antibiotic susceptibility (sensitivity)  test,  antimicrobial  and chemotherapy .  USA:  Mc  Graw  Hill Company.

## Pharmacoscript Volume 4 No. 1 Februari 2021
Haag, T. E., Loncrini, D. F. (1984). Esters of para-hydroxybenzoic  acid .  Kabara  JJ, ed.  Cosmetic  and  Drug  Preservation. New  York:  Marcel  Dekker.  Page  63–
77.
Harborne,  J.  B.  (2006).  Metode  Fitokimia,
Edisi  Kedua.  Terjemahan  Kosasih Padmawinata & Iwang Soediro. Bandung: ITB. Hariana,  A.  (2008). Tumbuhan  Obat  dan Khasiatnya Seri,  Cetakan  Kedua .
Jakarta: Penebar Swadaya.
Lund,  W.  (1994).  The Pharmaceutical Codex ,  12th  Edition.  London:  The
Pharmaceutical Press. Page 908-909.
Mario,  R.  (2016).  Uji  Aktivitas  Antibakteri Ekstrak  Buah  Sawo  Manila  ( Achras zapota L.)  dengan  Berbagai  Cairan
Penyari Terhadap Salmonella typhimurium . Journal of Pharmaceutical and Medicinal
Sciences . Vol. 1. Hal. 6-11.
Quelab.  (2005).  Mac  Farlands  Standars.
Available at www.quelab.com.
Rahmawati, D., Sukmawati, A. & Indrayudha, P. (2010). Formulasi Krim
Minyak  Atsiri  Rimpang  Temu  Giring (Curcuma  heyneana  Val  &  Zijp) :  Uji Sifat  Fisik  dan  Daya  Antijamur Terhadap Candida  albicans Secara  In
Vitro. Majalah Obat Tradisional, Vol. 15 (2), Hal. 56-63.
Robinson,  T.  (1995). Kandungan  Organik
Tumbuhan Tinggi , Edisi VI. Diterjemahkan oleh Kosasih
Padmawinata,  Bandung:  ITB.  Hal.
191-216.
Rowe,  R.  C.  et  Al.  (2006). Handbook  Of Pharmaceutical  Excipients, Edisi  V. London: Publisher-Science and Practice Royal Pharmaceutical Society of Great Britain.
Sasanti,  T.  J.,  Wibowo,  MS.,  Fidrianny,  I.
Dan Caroline, S. (2012). Formulasi Gel Ekstrak  Air  Teh  Hijau  dan  Penentuan Aktivitas  Antibakterinya  Terhadap Propionibacterium  Acnes .  Bandung: ITB.
Tranggono, I. R. dan Latifah F. (2014). Buku
Pegangan Dasar Kosmetologi:
Kosmetik  Dekoratif .  Jakarta:  PT.
Gramedia Pustaka Utama.
Utami,  P.  (2012). Antibiotik  Alami  untuk Mengatasi  Aneka  Penyakit .  Jakarta:
AgroMedia Pustaka.
Wasitaatmadja,  S.  M.  (2007). Acne,  Erupsi Acneiformis, Rosasea, Rinofima . Dalam  Ilmu  Penyakit  Kulit  dan Kelamin (Adi Djuanda, dkk-ed), Edisi V. Jakarta: FKUI. Hal. 254-259.
Wolverton,  S.  (2012).  Comprehensive Dermatologic  Drug  Therapy. Journal
Elsevier Health Sciences . Page 13.
Wyatt,  E.,  Sutter,  S.  H.,  and  Drake,  L.  A.
(2001). Dermatology  Pharmacology,
in  Goodman  and  Gilman’s  The Pharmacological
Basis of Therapeutics , Hardman, J. G., Limbird, L. E., Gilman, A. G. (Editor),
10th  Edition.  New  York:  McGraw-
Hill.
Zouboulis, C. C., McDowell, A., Patrick, S.,
Alexyev,  O.  A.  (2012).  An  Increased Incidence  of Propionbacterium  acnes
Biofilms  in Acne  Vulgaris :  A  Case-
Control  Study. British  Journal  of
Dermatology . British