BioEksakta: Jurnal Ilmiah Biologi Unsoed Volume 5, Nomor 3 (2023): 168-176 E-ISSN: 2714-8564

## Morfologi, Fisiologi, dan Produksi Kedelai (Glycine max (L.) Merr.) Kultivar Grobogan yang Ditanam di Daerah Pantai Cilacap
Didi Ramadani, Juwarno * , Rochmatino
Fakultas Biologi, Universitas Jenderal Soedirman, Jl. dr. Suparno 63 Purwokerto 53122 *Correspondent email : juwarno@unsoed.ac.id
Rekam Jejak Artikel:
Diterima  : 15/08/2022 Disetujui  : 02/09/2023

## Abstract
Soybean  is  one  of  the  vegetable  protein  commodities  which  is  widely  used  in  Indonesia. Currently,  most  of  the  domestic  soybean  needs  are  fulfilled  from  imports.  Fulfillment  of domestic  soybean  needs  can  be  done  by  increasing  soybean  cultivation  on  marginal  land, especially saline land. The land has the potential as a soybean planting area, but soybean is a plant  that  is  sensitive  to  salt  toxicity.  The  aim  of  this  study  was  to  determine  the  morpho- physiological characters and production of salinity-resistant Grobogan soybeans cultivar grown on  Coastal  Lengkong,  Cilacap.  The  study  was  conducted  on  two  areas  of  different  salinity located  on  the  Coastal  Lengkong,  Cilacap  using  the  Completely  Randomized  Design  (CRD) experimental method with 10 replications. Measurement of environmental factors (salinity, pH, moisture,  temperature,  humidity  and  light  intensity)  was  carried  out  with  5  replications.  The study have been conducted in March  – May 2021. The observed variables were morphology, physiology,  and  production  with  the  parameters  measured  were  plant  height,  stem  diameter, number  of  leaves,  leaf  length,  leaf  width,  content  of  chlorophyll  a,  chlorophyll  b,  total chlorophyll, carotenoids, and the number of pods. The data were analyzed using the mean test (t-test) with 95% confidence level. The results of this study showed that the parameters of stem diameter, chlorophyll a, chlorophyll b, carotenoids, and the number of soybean pods at 30 mM salinity  were  lower  than  20  mM  salinity  and  there  were  no  significant  differences  in  other parameters. The number of pods correlated with the levels of chlorophyll a, chlorophyll b, and carotenoids.
Key Words : morphology, physiology, production, salinity, soybean

## Abstrak
Kedelai  merupakan  salah  satu  komoditas  protein  nabati  yang  pemanfaatannya  sangat  luas  di Indonesia.  Saat  ini  sebagian  besar  kebutuhan  kedelai  dalam  negeri  dipenuhi  dari  hasil  impor. Pemenuhan kebutuhan kedelai dalam negeri dapat dilakukan dengan cara meningkatkan produksi dengan cara penanaman kedelai pada lahan marginal, khususnya lahan salin. Lahan tersebut dapat digunakan  sebagai  lahan  tanam  kedelai,  akan  tetapi  kedelai  merupakan  tanaman  yang  peka terhadap toksisitas garam. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui karakter morfologi, fisiologi, dan produksi kedelai kultivar Grobogan tahan salinitas yang ditanam di Pantai Lengkong, Cilacap. Penelitian dilakukan pada dua lahan dengan salinitas 20 mM dan 30 mM yang berada di pantai Lengkong Cilacap dengan menggunakan metode eksperimental Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan  10  kali  ulangan.  Pengukuran  faktor  lingkungan  (salinitas,  pH,  kelembapan  tanah,  suhu, kelembapan udara, intensitas cahaya) dilakukan dengan 5 kali ulangan. Penelitian dilakukan pada bulan Maret –Mei 2021. Variabel yang diamati adalah morfologi, fisiologi, dan produksi dengan parameter yang diukur adalah tinggi tanaman, diameter batang, jumlah daun, panjang daun, lebar daun,  kadar  klorofil  a,  klorofil  b,  total  klorofil,  karotenoid,  dan  jumlah  polong.  Data  dianalisis menggunakan uji rerata (uji-t) dengan taraf kepercayaan 95%. Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa  pada  parameter  diameter  batang,  klorofil  a,  klorofil  b,  karotenoid,  dan  jumlah  polong tanaman  kedelai  pada  salinitas  30  mM  lebih  rendah  dibandingkan  dengan  salinitas  20  mM  dan tidak ada perbedaan yang nyata pada parameter lainnya. Jumlah polong berkorelasi dengan kadar klorofil a, klorofil b, dan karotenoid.
Kata kunci: fisiologi, kedelai, morfologi, produksi, salinitas

## PENDAHULUAN
Kebutuhan  akan  sumber  karbohidrat,  protein, dan  lemak  terus  meningkat  seiring  dengan meningkatnya jumlah penduduk. Era modern seperti saat  ini,  masyarakat  mulai  mengurangi  konsumsi makanan  tinggi  karbohidrat  dan  menggantinya dengan  makanan  tinggi  protein.    Proses  perubahan komposisi  makanan  tersebut  disebabkan  oleh meningkatnya kesadaran akan pentingnya
keseimbangan gizi. Kurangnya asupan protein dapat berpengaruh terhadap terjadinya masalah kurang gizi (Ernawati et al ., 2016).
Kedelai  merupakan  salah  satu  sumber  nabati yang memiliki pemanfaatan sangat luas di Indonesia. Sekitar  90%  kedelai  dimanfaatkan  untuk  bahan pangan  dan  10%  digunakan  untuk  kebutuhan  lain. Produk  olahan  kedelai  menjadi  menu  makanan penting bagi masyarakat Indonesia (Dianawati et al ., 2013).  Nefasa et  al .  (2013)  menyebutkan  bahwa
minyak kedelai memiliki kandungan Omega-6 lebih tinggi  dibandingkan  dengan  minyak  nabati  lain seperti minyak kacang tanah dan minyak jagung. Hal ini didukung oleh Jooyandeh (2011) dan Waqas et al . (2014) yang menyatakan bahwa selain tinggi protein dan  minyak,  kedelai  mengandung  lemak  tak  jenuh, rendah  kalori,  bebas  lemak  dan  kolesterol,  serta mengandung  metabolit  sekunder  seperti  isoflavon, saponin, antosianin, dan lignin.
Indonesia  pada  tahun  2020  lalu  telah mengimpor  sebanyak  2475,3  ton  kedelai  dari berbagai  Negara  (BPS,  2021).  Data  tersebut menunjukkan  bahwa  produksi  kedelai  nasional belum  dapat  memenuhi  kebutuhan  konsumsi nasional. Hal ini dikarenakan kedelai hanya ditanam pada lahan subur dan kurangnya pemanfaatan lahan marginal  sebagai  lahan  tanam  kedelai.  Lahan marginal  merupakan  lahan  yang  memiliki  mutu rendah  baik  dari  segi  kesuburan  tanah,  potensi  dan produktivitasnya.  Meningkatnya  lahan  marginal  di Indonesia  seperti  lahan  salin  di  pesisir  pantai memiliki potensi sebagai lahan tanam kedelai. Akan tetapi kedelai merupakan tanaman yang sangat peka terhadap toksisitas garam (Na + dan Cl - ) (Purwaningrahayu & Taufiq, 2017). Untuk itu, perlu dilakukannya  upaya  untuk  mendapatkan  kedelai tahan  salinitas  yang  dapat  dilakukan  dengan menanam  secara  langsung  pada  lahan  salin.  Seleksi tanaman  dilakukan  dengan  cara  menanam  langsung kedelai  di  daerah  pantai.  Kedelai  yang  digunakan merupakan kedelai kultivar Grobogan yang diperoleh dari  Balai  Penelitian  Tanaman  Aneka  Kacang  dan Umbi (Balitkabi).
Kadar  garam  (NaCl)  yang  tinggi  pada  suatu lahan  dapat  berpengaruh  terhadap  kadar  pigmen fotosintesis pada tanaman. Garam dalam kadar yang tinggi  seperti  pada  lahan  salin  membuat  tanaman kesulitan  untuk  mendapatkan  unsur  lain  terutama unsur-unsur makro seperti N dan Mg yang digunakan oleh  tanaman  sebagai  bahan  penyusun  klorofil. Defisiensi unsur tersebut membuat tanaman memiliki kadar  klorofil  yang  rendah  sehingga  pertumbuhan dan  perkembangan  tanaman  akan  terganggu  akibat tidak  maksimalnya  proses  fotosintesis.  Hal  ini  akan menurunkan biomassa tanaman dan jumlah produksinya (Gu-wen et al ., 2014).
Menurut  Purwaningrahayu  &  Taufiq  (2017) salinitas  yang  tinggi  dapat  berpengaruh  terhadap morfologi  dan  fisiologi  tanaman  dikarenakan akumulasi ion Na + dan Cl - akan menyebabkan daun mengalami  nekrosis  sehingga  tepi  daun  akan mengering.  Lebih  lanjut  Zahra  &  Mehdi  (2011), menyatakan bahwa stress garam dapat menyebabkan penurunan produksi hingga 30% dan mempengaruhi pertumbuhan  dan  perkembangan  tanaman  kedelai. Oleh  karena  itu,  perlu  dilakukan  penelitian  lanjutan terhadap  karakter  morfologi,  fisiologi  dan  produksi kedelai  kultivar  Grobogan  yang  ditanam  di  daerah pantai  dengan  salinitas  berbeda  untuk  menguji  dan membandingkan karakter kedelai tahan salinitas.

## MATERI DAN METODE
Materi  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah biji kedelai kultivar Grobogan hasil screening , sampel tanah salin, aseton 80%, akuades, spektrofotometer, soil tester , environment tester, dan hand-refractometer .  Penelitian  ini  menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 2 perlakuan penanaman  pada  2  lahan,  salinitas  20  mM  dan  30 mM.  Perlakuan  diulang  sebanyak  10  kali  ulangan dengan total unit percobaan yang diperoleh sebanyak 20 unit percobaan.
1. Penanaman dan perawatan Kedelai
Biji kedelai ditanam di pantai Lengkong dengan jarak lubang tanam 25 cm. Setiap lubang tanam berisi 2 biji kedelai. Tanaman diberi pupuk sebanyak 2 kali menggunakan pupuk NPK pada minggu ke 2 dan ke 5  setelah  tanam.  Penyiangan  gulma  dilakukan  pada minggu  ke  5  serta  tidak  dilakukan  penyiraman  dan pemberian pestisida pada tanaman.
2. Pengukuran karakter morfologi
Karakter  morfologi  diukur  setelah  tanaman berumur  51  HST.  Karakter  yang  diukur  meliputi tinggi  tanaman  (cm),  panjang  daun  (cm),  dan  lebar daun  (cm)  diukur  menggunakan  penggaris  30  cm. Pengukuran diameter batang (cm) dilakukan dengan menggunakan  jangka  sorong.  Jumlah  daun  (helai) dan jumlah polong (buah) dihitung secara langsung. Setiap pengukuran dilakukan pengulangan sebanyak 10 kali.
3. Analisis kadar klorofil dan karotenoid
Sampel daun diambil dari tanaman berumur 31 HST. Waktu pengambilan sampel daun merujuk pada Hendriyani et  al .  (2018)  bahwa  kadar  klorofil tertinggi  dicapai  pada  fase  vegetatif  saat  tanaman berumur  sekitar  4  minggu  setelah  tanam.  Sampel daun kemudian kemudian ditimbang sebanyak 0,02 g setiap  daunnya  menggunakan  timbangan  analitik. Daun  kemudian  dihaluskan  menggunakan mortar dan pestle dengan ditambahkan aseton 80%. Setelah halus,  daun  disaring  menggunakan  kertas  saring untuk  memisahkan  ekstrak  dari  padatan  yang  tidak larut.  Ekstrak  daun  ditambah  dengan  aseton  80% hingga volumenya mencapai 4 mL dalam gelas beker. Ekstrak  kemudian  dimasukkan  ke  dalam  tabung reaksi  dan  ditutup  dengan  aluminium  foil.  Ekstrak kemudian diukur absorbansinya pada spektrofotometer UV-vis dengan panjang gelombang 646 nm, 663 nm dan 470 nm. Pengukuran absorbansi dilakukan  sebanyak  10  kali  ulangan.  Kadar  klorofil dan karotenoid dihitung menggunakan rumus berikut (Lichtenthaler & Wellburn, 1983; Harborne, 1984):
Klorofil a (µg. ml −1 ) = 12,21(A663) − 2,81(A646) Klorofil b (µg. ml −1 ) = 20,13(A646) − 5,03(A663) Total Klorofil (µg. ml −1 ) = 17,3(A646) − 7,18(A663)
Tabel 1. Nilai Rerata Faktor Edafik dan Klimatik Lahan Tanam Kedelai
Lahan Tanam Faktor Edafik Faktor Klimatik Salinitas (mM) pH Kelembapan (%) Suhu ( o C) Kelembapan (%) Intensitas Cahaya (lx) 1 20 6,10 80,00 34,06 72,48 10.414 2 30 5,12 78,00 36,14 71,18 14.116
Tabel 2. Rerata Karakter Morfologi Kedelai secara Kuantitatif pada Salinitas Berbeda
Salinitas (mM) Tinggi Tanaman (cm) Diameter Batang (mm) Jumlah Daun (helai) Panjang Daun (cm) Lebar Daun (cm) 20 24,45±5,47 a 3,76±0,78 a 18,60±3,59 a 9,06±1,00 a 5,54±0,57 a 30 21,30±2,45 a 2,99±0,49 b 16,80±2,78 a 8,52±0,87 a 4,90±0,85 a
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama antar perlakuan tidak berbeda nyata pada taraf uji dengan tingkat kepercayaan 95%.
Karotenoid (µg. ml −1 )
= (1000(A470)) − 3,27(Klorofil a) − 104(Klorofil b) 229
4. Pengukuran faktor edafik dan klimatik Faktor  edafik  yang  diukur  berupa  salinitas
(mM), pH, dan kelembapan tanah (%).  Pengukuran salinitas tanah dilakukan dengan menggunakan hand- refraktometer . Sampel tanah diambil pada kedalaman 20  cm  dari  permukaan  tanah.  Pengukuran  pH  dan kelembapan  tanah  menggunakan soil  tester .  Faktor klimatik yang diukur meliputi suhu ( o C), kelembapan udara  (%),  dan  intensitas  cahaya  (lx).  Pengukuran dilakukan  menggunakan environment  tester .  Semua pengukuran dilakukan satu kali dengan 5 ulangan saat tanaman berumur 51 HST antara pukul 10.00 hingga 11.00 WIB.
Data  yang  diperoleh  dari  hasil  pengukuran karakter morfologi, fisiologi dan produksi dianalisis menggunakan  uji  rerata  (uji-t)  dengan  tingkat kepercayaan  95%  untuk  membandingkan  rata-rata antara 2 kelompok.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Berdasarkan hasil pengamatan didapatkan data edafik dan klimatik lahan tanam satu memiliki nilai salinitas,  suhu,  dan  intensitas  cahaya  yang  lebih rendah  dibandingkan  dengan  lahan  tanam  dua  akan tetapi  lebih  tinggi  untuk  nilai  pH  dan  kelembapan (Tabel  1).  Perbedaan  pada  komponen  faktor lingkungan  tersebut  dapat  menyebabkan  perbedaan pada morfologi, fisiologi, dan produksi dari tanaman yang ditanam pada lahan tersebut. Hal ini didukung oleh  Taufik  &  Sundari  (2012)  yang  menyatakan bahwa  komponen-komponen  faktor  lingkungan mempengaruhi  pertumbuhan  tanaman  baik  secara langsung  maupun  tidak  langsung  dan  dapat  berupa perubahan morfologis maupun fisiologis. Berdasarkan  hasil  analisis  rerata  pada  karakter morfologi kedelai menunjukkan nilai rerata diameter batang  berbeda  nyata  pada  salinitas  20  mM  dan
salinitas  30  mM  dan  tidak  berbeda  nyata  untuk parameter  lainnya  (Tabel  2).  Perbedaan  diameter batang kedelai pada salinitas 20 mM dan salinitas 30 mM  terjadi  karena  adanya  perbedaan  kondisi lingkungan tumbuh.
Kedelai termasuk tanaman tidak tahan salinitas (glikofita),  sehingga  stress  salinitas  berpengaruh negatif  terhadap  pertumbuhan  tanaman  kedelai. Semakin  tinggi  salinitas  suatu  lahan  menyebabkan semakin terganggunya pertumbuhan kedelai. Terganggunya  pertumbuhan  kedelai  tersebut  dapat terlihat  pada  parameter  diameter  batang  yang menurun  pada  salinitas  30  mM.  Penurunan  tersebut terjadi karena stress salinitas menyebabkan penurunan  potensial  air  pada  tanah  yang  dengan demikian  akan  mencegah  penyerapan  air  oleh  akar dan  memicu  respon  yang  sama  seperti  respon defisiensi air. Respon tanaman terhadap defisiensi air dapat  berupa  menurunkan  luas  permukaan  batang, daun  dan  jumlah  daun  guna  mengurangi  proses transpirasi  yang  terjadi.  Respon  tersebut  akan membuat  diameter  batang,  panjang  dan  lebar  daun berukuran  lebih  kecil  serta  jumlah  daun  yang  lebih sedikit dibandingkan dengan tanaman yang ditanam pada lahan subur. Hal ini didukung oleh pernyataan Ellouzi et al . (2014) dan Sujinah & Jamil (2016) yang menyatakan  bahwa  defisiensi  air  menyebabkan tanaman  melakukan  adaptasi  berupa  memperkecil luas permukaan tanaman dan merangsang peningkatan sintesis dan pelepasan hormon ABA dari mesofil daun. Hormon ini berperan dalam penutupan stomata guna mengurangi transpirasi dan mempercepat penuaan dan senesens daun.
Tanaman  yang  tumbuh  pada  tempat  dengan kandungan air yang minim memiliki pembuluh xilem dengan diameter yang lebih kecil. Hal ini disebabkan karena pembuluh xilem berfungsi untuk distribusi air dari akar ke organ lainnya, sehingga ukurannya akan menyesuaikan dengan volume air yang dapat diserap oleh  akar.  Salinitas  yang  tinggi  membuat  tanaman kesulitan untuk menyerap air, sehingga tanaman akan
beradaptasi dengan memperkecil diameter pembuluh xilem. Pengecilan diameter pembuluh xilem ini akan berpengaruh  terhadap  diameter  batang  tanaman tersebut.  Oleh  karena  itu,  tanaman  kedelai  pada salinitas 30 mM memiliki diameter batang yang lebih kecil  dibandingkan  pada  tanaman  kedelai  yang tumbuh pada salinitas 20 mM. Hal ini didukung oleh penelitian  El-Rodeny  &  El-Okkiah  (2012)  yang menunjukkan  bahwa  diameter  batang  kedelai  akan mengecil seiring dengan peningkatan salinitas karena penurunan ketebalan korteks dan penurunan diameter pembuluh xilem. Penurunan diameter xilem tersebut disebabkan karena adanya represi terhadap pembentukan pembuluh xilem. Pengurangan produksi pembuluh xilem disebabkan oleh pengurangan  ekspansi  seluler  akibat  kadar  garam yang  tinggi  sehingga  menghasilkan  diameter pembuluh yang lebih kecil.
Tanaman  tingkat  tinggi  yang  tumbuh  pada kondisi non-salin mengandung K sebesar 100  - 200 mM  dan  mengandung  Na  sebesar  1  –  10  mM. Konsentrasi Cl yang tinggi pada tanah salin membuat tanaman  kekurangan  K  dikarenakan  Cl  dapat mengikat  K,  selain  itu  konsentrasi  Na yang  tinggi dapat menggantikan Ca pada membran plasma yang menyebabkan terjadinya efflux K sehingga menurunkan permeabilitas membran plasma. Membran  plasma  yang  menurun  permeabilitasnya akan  membuat  sel  rapuh  dan  lisis  (Taiz  &  Zeiger, 2010). Hal ini menimbulkan terjadinya nekrosis pada daun  kedelai  yang  ditunjukkan  dengan  matinya  sel- sel pada ujung-ujung daun kedelai (Gambar 1).
Gambar 1. Tanaman Kedelai Kultivar Grobogan 51 HST Keterangan: (I) Tepi daun yang mengalami nekrosis; (II) Helai daun; (III) Polong; dan (IV) Batang.
Faktor lain yang dapat mempengaruhi morfologi tanaman kedelai adalah pH tanah. Kedelai secara  umum  dapat  tumbuh  optimal  pada  pH mendekati  normal.  pH  yang  terlalu  rendah  ataupun terlalu tinggi dapat mengganggu proses metabolisme tanaman  yang  akan  memicu  perubahan  morfologis pada  tanaman.  Menurut  Irwan  &  Nurmala  (2018), tanaman kedelai tumbuh optimal pada pH 6,8, akan
tetapi masih dapat tumbuh dan berproduksi pada pH 5,5  hingga  6,5.  Penelitian  Lubis et  al .  (2015) menunjukkan  bahwa  tanaman  kedelai yang  ditanam pada  media  dengan  pH  5,65  memiliki  berat  kering yang lebih tinggi dibandingkan dengan yang ditanam pada  media  dengan  pH  4,83.  Hal  ini  menunjukkan bahwa semakin rendah pH tanah semakin rendah pula biomassa tanaman. Biomassa tanaman salah satunya dipengaruhi  oleh  diameter  batang,  semakin  besar diameter  batang  maka  semakin  tinggi  biomassa tanaman tersebut.
Nilai  pH  dapat  berpengaruh  terhadap  tingkat kelarutan dari berbagai unsur dalam tanah. Semakin rendah  nilai  pH  suatu  tempat  maka  kelarutan  unsur Al akan semakin meningkat. Menurut Bachtiar et al. (2016)  bahwa  pH  yang  terlalu  rendah  pada  lahan berpengaruh terhadap meningkatnya kelarutan unsur Al, Fe, dan Mn dalam tanah. Kelarutan yang terlalu tinggi  pada  unsur  tersebut  dapat  menyebabkan  efek keracunan pada tanaman dan mengganggu penyerapan  unsur  hara  seperti  P  dan  K.  Menurut Malik et al . (2017) unsur P digunakan oleh tanaman untuk  membentuk  ATP  dan  NADPH  yang berlangsung  di  grana.  ATP  dan  NADPH  tersebut dibutuhkan  untuk  mereduksi  CO 2 pada  saat  reaksi gelap  yang  berlangsung  di  stroma  yang  kemudian menghasilkan  karbohidrat.  Sehingga  jika  terjadi defisiensi  unsur  P  tanaman  akan  kesulitan membentuk  energi  dan  menghambat  pertumbuhan tanaman.  Unsur  K  berfungsi  sebagai  media transportasi  hara  termasuk  P  dari  akar  ke  daun  dan mentranslokasikan  asimilat  dari  daun  ke  seluruh bagian tumbuhan yang akan digunakan untuk proses pertumbuhan.  Selain  itu  menurut  Silahooy  (2008), unsur  K  juga  memiliki  fungsi  meningkatkan sklerenkim  pada  batang.  Sklerenkim  berfungsi memberi  penebalan  pada  batang  dan  kekuatan  pada jaringan. Hal ini menjelaskan mengapa kedelai yang ditanam pada pH 5,12 memiliki diameter batang yang lebih kecil dibandingkan dengan pada pH 6,10.
Intensitas  cahaya  juga  dapat  menjadi  faktor yang  mempengaruhi  karakter  morfologi.  Intensitas cahaya  yang  terlalu  rendah  akan  menyebabkan tanaman  mengalami  etiolasi  dan  jika  intensitas cahaya terlalu tinggi dapat menyebabkan pertumbuhan  tanaman  terhambat.  Hal  ini  terjadi karena di dalam jaringan tumbuhan terdapat hormon auksin  yang  dapat  terurai  jika  mendapat  paparan cahaya yang tinggi dan sebaliknya konsentrasi auksin akan meningkat jika tanaman tidak mendapat cahaya. Hormon  auksin  berfungsi  untuk  pemanjangan  sel. Hasil  penelitian  Ningrum et  al. (2020)  terhadap kedelai kultivar Dena 1 yang ditanam di lahan pasir pantai  tanpa  pemberian  pupuk  menunjukkan  bahwa tinggi  tanaman  pada  intensitas  cahaya  siang  hari sebesar  18.445  lx,  yaitu  37,50  cm  lebih  rendah dibandingkan  dengan  yang  ditanam  pada  intensitas cahaya 12.331 lx, yaitu sebesar 45,60 cm. Intensitas cahaya yang tinggi dapat merusak hormon auksin
Tabel 3. Rerata Kandungan Klorofil dan Karotenoid Kedelai pada Salinitas Berbeda
Salinitas (mM) Klorofil a (µg.ml -1 ) Klorofil b (µg.ml -1 ) Total Klorofil (µg.ml -1 ) Karotenoid (µg.ml -1 ) 20 6,36±1,01 a 3,51±0,52 a 1,31±0,26 a 1,08±0,22 a 30 4,14±0,97 b 2,81±0,68 b 1,29±0,38 a 0,53±0,19 b
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama antar perlakuan tidak berbeda nyata pada taraf uji dengan tingkat kepercayaan 95%.
dalam tanaman yang diperlukan untuk pemanjangan batang.  Menurut  Ariany et  al .  (2013),  auksin berperan merangsang pompa proton yang mengakibatkan  penurunan  pH  dinding  sel  sehingga enzim  yang  berfungsi  memecah  ikatan  silang  pada mikrofibril selulosa akan aktif. Proses tersebut akan membuat serat-serat dinding sel melonggar. Sel akan bersifat  lebih  lentur  dan  bebas  menyerap  air  secara osmosis sehingga sel akan bertambah panjang. Oleh karena  itu,  intensitas  cahaya  rendah  akan  membuat tanaman  lebih  tinggi  sedangkan  intensitas  cahaya yang  lebih  tinggi  menyebabkan  tanaman  lebih pendek.
Peningkatan  intensitas  cahaya  diikuti  dengan peningkatan suhu dan penurunan kelembapan (Tabel 1).  Suhu  yang  terlalu  rendah  maupun  terlalu  tinggi dapat  mengganggu  pertumbuhan  tanaman  karena dapat  mempengaruhi  kerja  enzim  dan  hormon tumbuh  dalam  tanaman  tersebut.  Kedelai  dapat tumbuh  dengan  baik  pada  rentang  suhu  21-34 o C, akan tetapi suhu optimum bagi pertumbuhan kedelai adalah 23-27 o C dan suhu optimum untuk pembentukan polong adalah 26,6-32 o C (Widiastuti & Latifah, 2016). Naiknya suhu di atas  suhu optimum akan  mereduksi  sintesis  protein  dan  berimbas terhadap menurunnya tingkat pertumbuhan (Juneja et al.,  2013).  Hal  ini  dapat  terjadi  karena  dengan meningkatnya  suhu  enzim  RuBisCO  ( Ribulose-1,5- bisphosphate  carboxylase  oxygenase )  mengikat banyak oksigen sehingga memicu fotorespirasi yang menyebabkan  tanaman  kehilangan  karbon  dan nitrogen  yang  berujung  pada  menurunnya  tingkat pertumbuhan tanaman (Taufiq & Sundari, 2012).
Kelembapan  udara  optimal  bagi  pertumbuhan kedelai adalah 75-90% dan saat fase pengisian polong dibutuhkan  kelembaban  udara  sekitar  65-75% (Sumarno  &  Manshuri,  2016).  Kelembapan  tanah optimal yang dibutuhkan adalah antara 70-85% dari kapasitas lapang tanah. Hasil pengukuran kelembapan menunjukkan bahwa kelembapan lahan tanam  telah  sesuai  dengan  kebutuhan  kedelai. Kelembapan tanah berkaitan dengan kadar air dalam tanah.  Air  merupakan  bagian  penting  dalam  proses pertumbuhan  tanaman  yang  mana  sekitar  70-90% dari  bobot  tanaman  adalah  air.  Kelembapan  yang terlalu  rendah  tidak  hanya  berpengaruh  terhadap pertumbuhan akan tetapi juga berpengaruh terhadap tingkat  perkecambahan  biji  kedelai  (Taufiq  & Sundari, 2012).
Hasil  pengukuran  terhadap  kadar  klorofil  dan karotenoid menunjukkan perbedaan yang nyata pada
semua  parameter  fisiologis  kecuali  total  klorofil (Tabel3). Kadar klorofil a, klorofil b, dan karotenoid pada salinitas 20 mM lebih rendah dibandingkan pada salinitas 30 mM. Kadar klorofil dan karotenoid pada tanaman  dipengaruhi  oleh  faktor  lingkungannya seperti  ketersediaan  unsur  pembentuk  klorofil, intensitas  cahaya,  salinitas  dan  pH  tanah.  Menurut Mlodzinska  (2009)  dan  Juneja et  al. (2013)  kadar pigmen fotosintesis bergantung pada pada intensitas cahaya, pH, suhu, salinitas, dan ketersediaan mineral seperti  magnesium  (Mg)  dan  normalnya  kadar klorofil a adalah 2-4 kali klorofil b.
Peningkatan salinitas pada tanah akan berpengaruh  terhadap  karakter  kimia  tanah  seperti peningkatan  yang  signifikan  pada  kadar  Na  dan  Cl. Menurut Purwaningrahayu & Taufiq (2017) dan Otie et al. (2021) kadar Na dan Cl yang tinggi pada tanah berpotensi  meracuni  tanaman.  Tanaman  akan mengakumulasi  banyak  ion  Na  dan  Cl  yang  akan mengganggu  penyerapan  ion  lain  seperti  Ca,  K,  N, Mg,  dan  P  sehingga  tanaman  akan  mengalami defisiensi  ion-ion  tersebut.  Hal  serupa  dilaporkan oleh Saufalian et al . (2013) bahwa kenaikan salinitas membuat  jumlah  K,  N,  klorofil  a,  dan  klorofil  b menurun. Seperti yang telah diketahui bahwa unsur N dan Mg digunakan sebagai bahan pembuatan klorofil (Firmansyah et  al .,  2017).  Defisiensi  unsur  tersebut menyebabkan klorofil sulit terbentuk yang berujung pada rendahnya proses fotosintesis yang terjadi. Hal ini akan menurunkan biomassa tanaman dan jumlah produksi bijinya (Gu-wen et al ., 2014). Akan tetapi, tidak hanya salinitas yang dapat mempengaruhi kadar klorofil  dan  karotenoid.  Faktor  lainnya  yang  dapat mempengaruhi adalah keasaman tanah.
Tanah yang bersifat asam mengandung unsur Al dan  Fe  yang  tinggi  yang  berpengaruh  terhadap ketersediaan  unsur  hara  makro  seperti  P  dan  N. Menurut Bachtiar et al. (2015), hal ini dapat terjadi karena  semakin  rendah  pH  suatu  tanah  maka kelarutan  dari  unsur  Al,  Fe,  dan  Mn  akan  semakin meningkat. Sehingga semakin rendah pH tanah maka tanaman  akan  semakin  kekurangan  unsur-unsur makro. Hal ini didukung oleh penelitian Lubis et al . (2015)  yang  menunjukkan  bahwa  kedelai  yang ditanam  pada  media  dengan  pH  4,84  memiliki serapan  N  dan  P  yang  lebih  rendah  dibandingkan dengan yang ditanam pada pH 5,65.
Selain  karena  salinitas  dan  pH,  kadar  klorofil dan karotenoid juga dapat dipengaruhi oleh intensitas cahaya yang diterima oleh tanaman. Intensitas cahaya
yang tinggi diduga dapat merusak pigmen tumbuhan. Pigmen  fotosintesis  yang  menerima  cahaya  dengan intensitas yang tinggi mengalami degradasi menjadi molekul  turunannya.  Hal  ini  sesuai  dengan  hasil penelitian  yang  dilakukan  oleh  Bestari et  al. (2018) menunjukkan bahwa kedelai varietas Grobogan yang ditanam  pada  tempat  dengan  intensitas  cahaya 1.568,22 lx dan 534 lx memiliki total klorofil sebesar 1,89  (µmol.g -1 )  dan  2,15  (µmol.g -1 )  dengan  kadar karotenoid    sebesar  477,76  (µmol.g -1 )  dan  526,67 (µmol.g -1 ).  Hendriyani et  al .  (2018)  menyatakan bahwa karotenoid selain sebagai pigmen fotosintesis juga  berfungsi  melindungi  klorofil  dari  intensitas cahaya tinggi dan kerusakan akibat oksidasi oleh O 2 , sehingga kadar karotenoid pada tanaman menyesuaikan dengan kadar klorofilnya.
Menurut  Pizarro  &  Stange  (2009),  penurunan pigmen  fotosintesis  pada  intensitas  cahaya  tinggi tersebut  disebabkan  oleh  adanya  peningkatan  foto- oksidasi  saat  intensitas  cahaya  meningkat  sehingga menyebabkan  terjadinya degradasi  terhadap pigmen fotosintesis.  Hal  tersebut  juga  dikemukakan  oleh Fitriyani et  al. (2017),  yang  menyebutkan  bahwa paparan  cahaya  yang  tinggi  dapat  mendegradasi klorofil  menjadi  senyawa  phaeophytin  akibat hilangnya  ion  Mg 2+ pada  klorofil.  Tanaman  yang mendapatkan intensitas cahaya yang tinggi cenderung  memiliki  pigmen  fotosintesis  yang  lebih rendah dibandingkan dengan tanaman yang mendapatkan  intensitas  cahaya  yang  lebih  rendah. Kuat  dan  lemahnya  intensitas  cahaya  akan mempengaruhi suhu dan kelembapan.
Suhu  dan  kelembapan  dapat  mempengaruhi kandungan klorofil dan karotenoid. Suhu yang tinggi dapat  merusak  klorofil  dan  karotenoid  dalam tanaman.  Selain  itu  suhu  tinggi  juga  dapat menghambat ataupun merusak enzim yang berperan dalam pembentukan pigmen klorofil, sehingga kadar klorofil  akan  menurun  pada  suhu  yang  tinggi. Menurut  Rohmat et  al. (2014)  suhu  yang  melebihi batas optimum dapat mendegradasi pigmen fotosintetik  seperti  klorofil  a,  klorofil  b,  dan karotenoid  menjadi  molekul-molekul  turunannya. Selain itu, suhu juga mempengaruhi kelembapan
Kelembapan yang sesuai akan menyediakan air yang  cukup  bagi  tanaman.  Tidak  terpenuhinya  air akan menyebabkan metabolisme tanaman terganggu karena  air  berfungsi  sebagai  pelarut  unsur  hara  dan fotosintat. Terganggunya metabolisme tanaman akan berpengaruh  terhadap  produksi  pigmen  fotosintesis. Hal  ini  didukung  oleh  Song  &  Banyo  (2011)  yang menyatakan bahwa ketersediaan air yang minim akan menghambat  sintesis  klorofil  pada  daun  karena  laju fotosintesis  menurun  dan  terjadinya  peningkatan suhu dan transpirasi yang menyebabkan disintegrasi klorofil.  Sedangkan  menurut  Meher et  al. (2018) kelembapan  yang  berada  dibawah  batas  akan menyebabkan  defisit  air  bagi  tanaman  yang  akan memicu  produksi Reactive  Oxygen  Species (ROS)
seperti  O 2 dan  H 2 O 2 yang  dapat  menjadi  penyebab peroksidasi lipid dan destruksi klorofil.
Klorofil  dan  karotenoid  digunakan  oleh tanaman  untuk  mengabsorpsi  cahaya.  Penurunan kadar  pigmen  fotosintesis  tersebut  menyebabkan menurunnya absorpsi cahaya oleh tanaman. Menurut Maman et  al .  (2014)  berkurangnya  absorpsi  cahaya matahari  akan  menyebabkan  penurunan  efisiensi reaksi fotokimia pada fotosistem II yang terdiri dari proses  fotolisis  air  dan  fosforilasi.  Hambatan  pada kedua  proses  tersebut  menyebabkan  pemecahan  air dan  pembentukan  ATP  menjadi  tidak  maksimal. Atom  hidrogen  hasil  fotolisis  air  digunakan  untuk mereduksi  NADP  menjadi  NADPH 2 .  ATP  bersama NADPH 2 diperlukan  dalam  fiksasi  CO 2 saat  siklus Calvin  terjadi.  Hal  ini  membuat  produk  fotosintesis yang  berupa  molekul  gula  menjadi  sulit  terbentuk. Keadaan  demikian  jika  terus  menerus  terjadi  maka akan  menurunkan  produktivitas  dari  tanaman tersebut.
Parameter  produksi  juga  menunjukkan  adanya perbedaan jumlah polong yang nyata dengan rata-rata jumlah  polong  pada  salinitas  20  mM  lebih  besar dibandingkan  dengan  salinitas  30  mM  (Tabel  4.4), (Lampiran 3). Penelitian Wahyuni et al. (2018) pada berbagai  kultivar  kedelai  yang  ditanam  pada  lahan sawah menunjukkan bahwa kedelai kultivar Grobogan  dapat  menghasilkan  rata-rata  polong sebanyak 39,33 buah pertanaman. Hal ini menunjukkan  bahwa  produksi  polong  baik  pada salinitas 20 mM maupun salinitas 30 mM masih jauh dari  jumlah  polong  optimal  yang  dapat  dihasilkan oleh  kedelai  kultivar  Grobogan  tersebut.  Produksi polong yang tidak optimal dapat berhubungan dengan parameter  morfologi  ataupun  dengan  parameter fisiologi.
Tabel  4. Rerata  Jumlah  Polong  Kedelai  pada Salinitas Berbeda
Salinitas (mM) Jumlah polong (buah) 20 22,40±5,56 a 30 11,70±2,75 b
Keterangan:  Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  antar perlakuan tidak berbeda nyata pada taraf uji dengan tingkat kepercayaan 95%.
Hasil uji korelasi menunjukkan bahwa parameter  morfologi  menunjukkan  hubungan  yang tidak  signifikan  dengan  jumlah  polong  (p>0,05), (Lampiran  4).  Uji  yang  sama  dilakukan  terhadap parameter  fisiologi  berupa  kadar  klorofil  a  dan karotenoid  menunjukkan  hubungan  yang  sangat signifikan  dengan  jumlah  polong  (p<0,01)  dengan nilai korelasi r = 0,63 dan r = 0,61, sedangkan untuk klorofil  b  menunjukkan  hubungan  yang  signifikan dengan jumlah polong (p<0,05) dengan nilai korelasi r  =  0,50,  dan  total  klorofil  menunjukkan  hubungan yang  tidak  signifikan  dengan  jumlah  polong (p>0,05), (Lampiran 4). Nilai koefisien korelasi 0,41-
0,70  diinterpretasikan  sebagai  hubungan  sedang (Astuti,  2017).  Semua  parameter  fisiologi  memiliki tingkat  hubungan  sedang  dengan  jumlah  polong kecuali  untuk  total  klorofil.  Uji  korelasi  tersebut menunjukkan  bahwa  parameter  fisiologis  berupa kadar  klorofil  a,  klorofil  b,  dan  karotenoid berpengaruh terhadap jumlah polong yang dihasilkan.
Klorofil  dan  karotenoid  memiliki  hubungan dengan  jumlah  polong  karena  klorofil  berperan secara  langsung  dalam  metabolisme  pembentukan energi  dan  karbohidrat  yang  akan  disimpan  dalam biji.  Kadar  klorofil  dan  karotenoid  pada  tanaman akan  menentukan  banyaknya  fotosintat  yang  akan diakumulasikan  pada  polong  yang  diproduksi  oleh tanaman tersebut. Hal ini didukung oleh Ningrum et al. (2020)  menyebutkan  bahwa  klorofil  memiliki peran  penting  sebagai  penangkap  energi  matahari untuk  menghasilkan  ATP  dan  NADPH  pada  proses fotosintesis. Klorofil a berperan sebagai pusat reaksi yang mengabsorpsi dan mengkonversi energi cahaya menjadi  energi  kimia.  Klorofil  b  berperan  dalam reorganisasi  fotosistem  selama  proses  adaptasi terhadap  kualitas  dan  intensitas  cahaya  yang  lebih rendah.  Selanjutnya,  menurut  Hendriyani et  al. (2018)  karotenoid  dalam  fotosintesis  berperan sebagai pigmen pelengkap yang membantu mengabsorpsi  energi  cahaya.  Energi  yang  diserap akan  diteruskan  ke  klorofil  sehingga  energi  yang digunakan  pada  proses  fotosintesis  menjadi  lebih besar.  Menurut  Mastur  (2015),  fotosintesis  selain menghasilkan energi untuk pertumbuhan organ juga menghasilkan  fotosintat  berupa  karbohidrat  yang akan banyak didistribusikan ke buah, biji, dan organ seksual dan oleh karena itu kadar pigmen fotosintesis pada  suatu  tanaman  akan  mempengaruhi  produksi buah dan biji pada tanaman tersebut.

## SIMPULAN
Karakter morfologi kedelai yang ditanam pada salinitas 20 mM memiliki diameter batang yang lebih besar  secara  signifikan  dibandingkan  pada  salinitas 30  mM  dan  tidak  berbeda  pada  parameter  tinggi batang, jumlah daun, lebar daun, dan panjang daun. Karakter  fisiologi  tanaman  kedelai  yang  ditanam pada  salinitas  20  mM  memiliki  kadar  klorofil  a, klorofil  b,  dan  karotenoid  yang  lebih  tinggi dibandingkan  pada  salinitas  30  mM  serta  tidak berbeda  pada  parameter  total  klorofil.  Rerata produksi polong pada salinitas 20 mM sebanyak 22,4 buah dan pada salinitas 30 mM sebanyak 11,7 buah.

## DAFTAR REFERENSI
Ariany,  S.P.,  Sahiri,  N.  &  Syakur,  A.,  2013.
Pengaruh Kuantitas Cahaya terhadap
Pertumbuhan  dan  Kadar  Antosianin  Daun Dewa. Jurnal Agrotekbis , 1(5), pp.413-20.
Astuti,  C.C.,  2017.  Analisis  Korelasi  untuk Mengetahui  Keeratan  Hubungan  antara Keaktifan  Mahasiswa  dengan  Hasil  Belajar Akhir. Journal of Information and Computer Technology Education , 1(1), pp.1-7.
Bachtiar G., M., Melati, M., Guntoro, D. & Sutandi, A.,  2016.  Kebutuhan  Nitrogen  Tanaman Kedelai  pada  Tanah  Mineral  dan  Mineral Bergambut  dengan  Budidaya  Jenuh  Air. Penelitian  Pertanian  Tanaman  Pangan , 35(3), pp.217-27.
Bestari,  A.V.,  Darmanti,  S.  &  Parman,  S.,  2018.
Respon Fisiologis Kedelai [ Glycine max (L.) Merr.]  Varietas  Grobogan  terhadap  Tingkat Naungan  yang  Berbeda. Biospecies ,  11(2), pp.53-62.
BPS,  2021. Impor  Kedelai  Menurut  Negara  Asal
Utama . [Online] Available
at:
https://www.bps.go.id/statictable/2019/02/14/ 2015/impor-kedelai-menurut-negara-asal- utama-2010-2019.html [Accessed 26 November 2021].
Dianawati,  M.,  Handayani,  D.P.,  Matana,  Y.R.  & Belo,  S.M.,  2013.  Pengaruh  Cekaman Salinitas Terhadap Viabilitas dan Vigor Benih Dua  Varietas  Kedelai  ( Glycine  max .  L)).
AGROTROP , 3(2), pp.35-41.
Ellouzi,  H.,  Hamed,  K.B.,  Hernandez,  I.,  Cela,  J., Muller, M., Magne, C., Abdelly, C. & Bosch, S.M.,  2014.  A  Comparatives  Study  of  The Early  Osmotic,  Ionic,  Redox  and  Hormonal Signaling  Response  in  Leaves  and  Roots  or Two  Halophytes  and  A  Glycophyte  to Salinity. Planta , 240(6), pp.1299-317.
El-Rodeny,  W.M.  &  EL-Okkiah,  A.F.S.,  2012. Physiological  and  Anatomical  Changes  in Glycine  max L.  Under  Salinity  Stress. Egyptian Journal of Botany. 2nd International Conference , pp.37-50.
Ernawati,  F.,  Prihatini,  M.  &  Yuriestia,  A.,  2016. Gambaran  Konsumsi  Protein  Nabati  dan Hewani  pada  Anak  Balita  Stunting  dan  Gizi Kurang  di  Indonesia. Nutrition  and  Food Research , 39(2), pp.95-102.
Firmansyah,  I.,  Syakir,  M.  &  Lukman,  L.,  2017. Pengaruh Kombinasi Dosis Pupuk N, P, dan K terhadap  Pertumbuhan  dan  Hasil  Tanaman Terung  ( Solanum  melongena L.). Jurnal Holtikultura , 27(1), pp.69-78.
Fitriyani,  W.,  Harpeni,  E.  &  Muhaemin,  M.,  2017. Pengaruh  Intensitas  cahaya  terhadap  Pigmen Carotenoid,  Fucoxanthin,  dan  Phaeophytin Zooxanthellae  dari  Isolat  Karang  Lunak Zoanthus sp. Maspari  Journal ,  9(2),  pp.121- 30.
Gu-wen, Z., Sheng-chun, X., Qi-zan, H., Wei-hua, M. &  Ya-ming,  G.,  2014.  Putrescine  Plays  a Positive  Role  in  Salt-Tolerance  Mechanism by  Reducing  Oxidative  Damage  in  Roots  of Vegetable Soybean. ScienceDirect: Journal of Integrative Agriculture , 13(2), pp.349-57.
Harborne,  J.B.,  1984. Phytochemical  Methods:  A Guide  to  Modern  Techniques  of  Plant Analysis .  2nd  ed.  New  York:  Chapman  and Hall.
Hendriyani, I.S., Nurchayati, Y. & Setiari, N., 2018. Kandungan  Klorofil  dan  Karotenoid  Kacang Tunggak ( Vigna unguiculata (L.) Walp.) pada Umur  Tanam  yang  Berbeda. Jurnal  Biologi Tropika , 1(2), pp.38-43.
Irwan,  A.  &  Nurmala,  T.,  2018.  Pengaruh  Pupuk Hayati dan Pengapuran terhadap Produktivitas Kedelai di Tanah Inceptisol Jatinagor. Jurnal Kultivasi , 17(2), pp.656-63.
Jooyandeh,  H.,  2011.  Soy  Products  as  Healthy  and Functional  Foods. Middle-East  Journal  of Scientific Research , 7(1), pp.71-80.
Juneja,  A.,  Ceballos,  R.M.  &  Murthy,  G.S.,  2013. Effects of Environmental Factors and Nutrient Availability on the Biochemical Composition of Algae for Biofuels Production: A Review. Energies , 6(1), pp.4607-38.
Juwarno,  Suparjana,  T.B.  &  Abbas,  M.,  2018.
Mahameru  Soybean  ( Glycine  max )  Cultivar, High  Salinity  Tolerant. Biosaintifika ,  10(1), pp.23-31.
Lichtenthaler,  H.K.  &  Wellburn,  A.R.,  1983. Determination  of  Total  Carotenoids  and Chlorophylls  a  and  b  of  Leaf  Extracts  in Different Solvent. Biochemical Society Transactions , 11, pp.591-92.
Lubis, D.S., Hanafiah, A.S. & Sembiring, M., 2015. Pengaruh  pH  terhadap  Pembentukan  Bintil Akar,  Serapan  Hara  N,  P,  dan  Produksi Tanaman  pada  Beberapa  Varietas  Kedelai pada Tanah Inseptisol di Rumah Kasa. Jurnal Online Agroekoteknologi , 3(3), pp.1111-15.
Malik, M., Hidayat, K.F., Yusnaini, S. & Rini, M.V., 2017.  Pengaruh  Aplikasi  Fungi  Mikoriza Arbuskula  dan  Pupuk  Kandang  Berbagai Dosis  terhadap  Pertumbuhan  dan  Produksi Kedelai  ( Glycine  max (L.)  Merrill)  pada Ultisol. Jurnal  Agrotek  Tropika ,  5(2),  pp.63- 67.
Maman,  Rochmatino  &  Muljowati,  J.S.,  2014. Hubungan  Intensitas  Penyakit  Karat  dengan Produktivitas Tanaman Kedelai ( Glycine max (L.) Merr.) pada Beberapa Varietas Berbeda. Scripta Biologica , 1(2), pp.173-77.
Mastur,  2015.  Sinkronisasi  Source  dan  Sink  untuk Peningkatan Produktivitas Biji pada Tanaman Jarak  Pagar. Buletin  Tanaman  Tembakau, Serat & Minyak Industri , 7(1), pp.52-68.
Meher, Shivakrishna, P., Reddy, K.A. & Rao, D.M., 2018.  Effect  of  PEG-6000  Imposed  Drought Stress  on  RNA  Content,  Relative  Water Content  (RWC),  and  Chlorophyll  Content  in Peanut  Leaves  and  Roots. Saudi  Journal  of Biological Science , 25, pp.285-89.
Mlodzinska,  E.,  2009.  Survei  of  Plant  Pigments: Molecular  and  Environmental  Determinants of Plant Colors. Acta Biologica Cracoviensia , 51(1), pp.7-16.
Nefasa,  A.N.,  Legowo,  A.M.  &  Al-Baarri,  A.N., 2013.  Efek  Penambahan  Minyak  Kedelai Terhadap  Karakteristik  Organoleptik  dan Kandungan  Omega-6  Susu  Pasteurisasi. Jurnal Pangan dan Gizi , 4(8), pp.35-44.
Ningrum,  S.M.,  Tohari  &  Respatie,  D.W.,  2020.
Pengaruh  Tingkat  Naungan  dan  Takaran Pupuk  Kandang  Kambing  Etawa  terhadap Pertumbuhan dan Hasil Kedelai ( Glycine max (L.) Merrill) di Lahan Pasir Pantai. Vegetalika , 9(2), pp.373-87.
Otie, V., Udo, I., Shao, Y., Itam, M.O., Okamoto, H., An, P. & Eneji, E.A., 2021. Salinity Effects on Morpho-Physiological  and  Yield  Traits  of Soybean  ( Glycine  max L.)  as  Mediated  by Foliar  Spray  with  Brassinolide. Plants , 10(541), pp.1-22.
Parihar,  P.,  Singh,  S.,  Singh,  R.,  Singh,  V.P.  & Prasad,  S.M.,  2015.  Effect  of  Salinity  Stress on  Plant  and  its  Tolerance  Strategies:  a review. Environmental Science and Pollution Research , 22(6), pp.4056-75.
Pizarro,  L.  &  Stange,  C.,  2019.  Light-dependent Regulation  of  Carotenoid  Biosynthesis  in Plants. Ciencia  e  Investigacion  Agraria , 36(2), pp.143-62.
Purwaningrahayu, R.D., 2016. Karakter Morfofisiologi dan Agronomi Kedelai Toleran  Salinitas. Iptek  Tanaman  Pangan , 11(1), pp.35-48.
Purwaningrahayu, R.D. & Taufiq, A., 2017. Respon Morfologi Empat Genotipe Kedelai Terhadap Cekaman Salinitas. Jurnal Biologi Indonesia , 13(2), pp.175-88.
Rohmat,  N.,  Ibrahim,  R.  &  Riyadi,  P.H.,  2014.
Pengaruh Perbedaan Suhu dan Lama Penyimpanan Rumput Laut Sargassum polycystum terhadap Stabilitas Ekstrak Kasar Pigmen  Klorofil. Jurnal  Pengolahan  dan Bioteknologi  Hasil  Perikanan ,  3(1),  pp.118- 26.
Saufalian, O., Miandoab, P.B., Asghari, A., Sedghi, M. & Eshghi, A., 2013. Relationship between Salt  Tolerance  Related  Physiological  Traits and  Protein  Markers  in  Soybean  Cultivars ( Glycine  max L.). Cercetari  Agronomice  in Moldova , 46(4), pp.47-56.
Silahooy,  C.,  2008.  Efek  Pupuk  KCl  dan  SP-36 terhadap  Kalium  tersedia,  Serapan  Kalium dan  Hasil  Kacang  Tanah  ( Arachis  hypogaea L.) pada Tanah Brunizem. Buletin Agronomi , 36(2), pp.126-32.
Song, A.N. & Banyo, Y., 2011. Konsentrasi Klorofil Daun sebagai Indikator Kekurangan Air pada Tanaman. Jurnal Ilmiah Sains , 11(2), pp.166- 73.
Sujinah  &  Jamil,  A.,  2016.  Mekanisme  Respon Tanaman Padi terhadap Cekaman Kekeringan dan Varietas Toleran. Iptek Tanaman Pangan , 11(1), pp.1-8.
Sumarno  &  Manshuri,  A.G.,  2016. Persyaratan Tumbuh  dan  Wilayah  Produksi  Kedelai  di Indonesia . Malang: Balai Penelitian Tanaman Kacang-kacangan dan Umbi-umbian.
Taiz, L. & Zeiger, E., 2010. Plant Physiology . 5th ed. Sunderland: Sinauer Associates Inc.
Taufiq,  A.,  Kristiono,  A.  &  Harnowo,  D.,  2015. Respon  Varietas  Unggul  Kacang  Tanah terhadap  Cekaman  Salinitas. Penelitian Pertanian  Tanaman  Pangan ,  34(2),  pp.153- 64.
Taufiq,  A.  &  Sundari,  T.,  2012.  Respon  Tanaman Kedelai  terhadap  Lingkungan  Tumbuh. Buletin Palawija , 1(23), pp.13-26.
Wahyuni, S., Trisnaningsih, U. & Prasetyo, M., 2018. Pertumbuhan  dan  Hasil  Sembilan  Kultivar Kedelai  ( Glycine  max (L.)  Merrill)  di  Lahan Sawah. Jurnal Agrosintesa , 1(2), pp.96-102.
Waqas,  M.,  Khan,  A.L.,  Kang,  S.M.,  Kim,  Y.H.  & Lee,  I.J.,  2014.  Phytohormone-producing Fungal  Endophytes  and  Hardwood-derived Biochar  Interact  to  Heavy  Metal  Stress  in Soybean. Biol Fertil Soils , 50(7), pp.1155-67.
Widiastuti,  E.  &  Latifah,  E.,  2016.  Keragaan Pertumbuhan  dan  Biomassa  Varietas  Kedelai ( Glycine  max (L))  di  Lahan  Sawah  dengan Aplikasi  Pupuk  Organik  Cair. Jurnal  Ilmu Pertanian Indonesia , 21(2), pp.90-97.
Zahra, R. & Mehdi, A., 2011. The Effect of Salinity and Seed Size on Seed Reserve Utilization and Seedling  Growth  of  Soy  Bean  (Glycine  max). International  Journal  of  Agronomy  and  Plant Production , 2(1), pp.1-4.