## IDENTIFIKASI AWAL FUNGI MIKORIZA ARBUSKULAR DARI RHIZOSFER TANAH GAMBUT TANAMAN KOPI LIBERIKA TUNGKAL JAMBI

## Lizawati, Elis Kartika dan Gusniwati
Dosen Fakultas Pertanian, Universitas Jambi email: liza_wati@unja.ac.id

## ABSTRAK
Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk  mendapatkan keanekaragaman  jenis  mikoriza  yang terdapat  pada  rhizosfer  tanaman  Libtujam  pada  lahan  gambut    di  Kelurahan  Mekar  Jaya, Kecamatan Betara, Kabupaten Tanjung Jabung Barat. Penelitian dilaksanakan di kebun kopi Libtujam  milik  petani  yang  berada  di  Desa  Parit  Tomo  dan di  laboratorium  Bioteknologi Tanaman  Fakultas  Pertanian  Universitas  Jambi.  Hasil  yang  diperoleh  dari  penelitian  ini adalah  :  a). Kepadatan  spora  per  50g  sampel  tanah dari  tegakan tanaman  kopi  Liberika Tungkal  Jambi, ternyata  jenis Glomus  sp-11 memiliki  kepadatan  spora  tertinggi  yaitu  172 buah  dibandingkan  jenis  FMA  yang  lainnya. b).  Hasil  isolasi  atas  dasar  karakteristik morfologi  dan  responnya  terhadap  larutan  Melzer’s  pada  conto h  tanah  di  rhizosfir  tanaman kopi Liberika Tungkal Jambi ditemukan 2 genus spora yaitu  Glomus dan Acaulospora.

## Kata kunci: Kopi liberika, Fungi Mikoriza, Rhizosfer

## PENDAHULUAN
Kopi Liberika yang terluas dibudidayakan di Indonesia terdapat di Provinsi Jambi tepatnya di Kabupaten Tanjung Jabung Barat. Luas areal perkebunan kopi liberika di Tanjung Jabung Barat pada tahun 2012 mencapai 2.538 ha dengan total produksi mencapai 1.114 ton dan total produktivitas 586  kg  ha -1 .  Pada  tahun  2013  mencapai  2.710  ha -1 dengan  total  produksi mencapai  1.227  ton  dan  total  produktivitas  622  kg  ha -1 (Dinas  Perkebunan  Provinsi  Jambi, 2014).  Menteri  Pertanian  telah  melepas  kopi  liberika  ini  sebagai  varietas  unggul  nasional dengan  nama  kopi  varietas  Liberika  Tungkal  Komposit  (Libtukom)  dan  telah  ditetapkan sebagai  varietas  bina  melalui  Keputusan  Menteri  Pertanian  Republik  Indonesia  No. 4968/Kpts/SR.120/12/2013  tanggal  6  Desember  2013,  sekarang  dikenal  dengan  nama  Kopi Liberika Tungkal Jambi (Libtujam).
Pusat  Penelitian  Kopi  dan  Kakao Jember  pada  tahun  2012  telah  melakukan  proses pemilihan pohon induk terpilih sebagai sumber bahan tanam untuk perbanyakan tanaman kopi Libtujam di lokasi Parit Tomo, Parit Lapis dan Parit Panglong. Pohon induk tersebut ditandai dengan  cat  berwarna  merah  sebagai  penanda  pohon  terpilih  dan  telah  memiliki  Surat Keputusan dari Kepala  Dinas Perkebunan Propinsi Jambi No. 25 / KPTS / Disbun BP2MB- 1.2/2012,tanggal 14 Februari 2012. Pohon induk terpilih ini akan digunakan sebagai sumber bahan    untuk  perbanyakan  tanaman  kopi  Libtujam. Pohon  induk  terpilih  sebagai  sumber bahan  tanam  berlokasi  di  Parit  Tomo,  Parit  Lapis  dan  Parit  Panglong. Kopi  Libtujam  ini merupakan satu-satunya jenis kopi yang dapat dikembangkan di daerah gambut.
Tanah  gambut  merupakan  tanah  yang  tersusun  atas  bahan  organik  yang  telah terdekomposisi  (lapuk).  Tanah  gambut  memiliki  kadar  keasaman  (pH)  yang  tinggi  serta memiliki  tingkat  ketebalan  yang  berbeda-beda  (Noor,  2000).  Sagiman  (2007)  menyatakan kondisi tanah gambut yang masam menyebabkan kurangnya unsur hara pada tanah gambut.
Pemanfaatan  hara  yang  ada  di  perakaran  tanaman  (rhizosfer)  libtujam  tidak  hanya tergantung  oleh  sejumlah  hara,  tetapi  juga  adanya  interaksi  dengan  Fungi  Mikoriza Arbuskular (FMA) yang ada di rhizosfer. FMA ini dapat menjadi perantara pada penyerapan dan penyediaan hara. Menurut Maschner (1998) dan Fortuna et al. (1996) bahwa FMA yang menginfeksi  perakaran  tanaman  inang  akan  memproduksi  jalinan  hifa  sehingga  tanaman bermikoriza  akan  mampu  meningkatkan  kapasitasnya  dalam  menyerap  unsur  hara, menstimulasi pertumbuhan, meningkatkan ketahanan terhadap kekurangan air serta serangan patogen tanah.
Mikoriza  berdasar  cara  diperolehnya  ada  dua  yaitu  mikofer  dan  indigenous. Mikoriza indigenous  merupakan  jenis  mikoriza  yang  ditemukan  berasosiasi  dengan  perakaran tumbuhan  secara  alami  tanpa  campur  tangan  manusia  dalam  proses  infeksi  awal  antara mikoriza  dengan  tumbuhan  inang.  Mikoriza  indigenous  memiliki  potensi  yang  tinggi  untuk membentuk  infeksi  yang  ekstensif  karena  mengenali  tanaman  inangnya  selain  itu  mikoriza indigenous  memiliki  sifat  toleransi  yang  lebih  tinggi  terhadap  kondisi  lingkungan  dengan cekaman yang tinggi (Delvian 2006).
Mikoriza  indigenous  berpotensi  besar  sebagai  pupuk  hayati  karena  salah  satu  sumber mikroorganisme. Mikroorganisme tersebut dapat memfasilitasi penyerapan hara dalam tanah sehingga dapat  meningkatkan  pertumbuhan  tanaman.  Akan  tetapi  adakalanya  asosiasi mikoriza  tidak  selalu  menguntungkan  tanaman  inangnya  tergantung  pada  faktor  lingkungan (Pang & Paul 1980). Dengan demikian hanya beberapa atau tidak semua mikoriza bermanfaat bagi tanaman inangnya.
Karena  terdapat  perbedaan  kemampuan  spesies  mikoriza  dalam  meningkatkan pertumbuhan tanaman maka perlu dilakukan isolasi dan identifikasi mikoriza indigenous dari perakaran  tanaman  kopi  libtujam.  Sampai  saat  ini  belum  ada  laporan  keanekaragaman  jenis mikoriza  yang  terdapat  pada  rhizosfer  tanaman  Libtujam  pada  lahan  gambut    di  Provinsi Jambi.
Tujuan  penelitian  ini  adalah  untuk  mendapatkan keanekaragaman  jenis  mikoriza  yang terdapat  pada  rizosfer  tanaman  libtujam  pada  lahan  gambut    di Kelurahan  Mekar  Jaya, Kecamatan Betara, Kabupaten Tanjung Jabung Barat.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  dilaksanakan di  kebun  kopi Libtujam  milik  petani  yang  berada  di  Desa  Parit Tomo  Kelurahan  Mekar  Jaya  Kecamatan  Betara  Kabupaten  Tanjung  Jabung  Jabarat  dan di laboratorium  Bioteknologi  Tanaman  Fakultas  Pertanian  Universitas  Jambi,  Mendalo  Darat. Penelitian ini direncanakan selama 6 bulan, dari bulan Juni sampai bulan November 2016.
Bahan  yang  digunakan  adalah  komposit  tanah  di  bawah  tegakan  tanaman  kopi  Libtujam, batuan  zeolit  berukuran  2-4  mm,  benih Pueraria  javanica,  Hyponex  merah  (25-5-20), desinfektan  Bayclin,    larutan glukosa  60%,  larutan  pewarna  Melzer’s,  larutan  pengawet PVLG  (Polyvinil  alkohol  lactic  acid  glycerol),  pot-pot  plastik  kecil,  KOH  10%,  HCl  2%, larutan  staining  (Trypan  blue  0,05%),  dan  larutan  destaining.  Alat  yang  digunakan  adalah saringan  test  sieve  45 μm,  425  μm,  dan  710  μm;  tabung  sentrifuse  50  ml,  pipet  mikro, mikroskop binokuler dan compound, sentrifuse, kaca preparat dan cover glass.
Contoh  tanah  dan  akar  diambil  dari  sekitar  perakaran  tanaman  kopi  dengan  jarak  50-100 cm  dari  pangkal  batang  dan  pada  ke  dalaman  0-20  cm  dari  tiga  sublokasi,  dan  kemudian ketiga  contoh  tanah  tersebut  disatukan.  Biakan  pot  dibuat  dengan  cara  menggunakan  gelas- gelas plastik yang pertama-tama diisi dengan zeolit sebanyak 1/3 volume gelas, kemudian 50 g  contoh  tanah  yang  berasal  dari  masing-masing  tegakan  tanaman  kopi  dan  terakhir  ditutup dengan zeolit setebal  ± 1 cm. Pada setiap gelas plastik selanjutnya ditanam 2-3 kecambah P. Javanica sebagai tanaman inang.
Kecambah P.  Javanica sebelumnya  dipersiapkan dengan  cara  menyemaikan  benihnya pada media zeolit.  Kecambah dipelihara di dalam rumah kaca dan siap digunakan bila telah memiliki  sepasang  daun.  Biakan  pot  selanjutnya  dipelihara  di  dalam  rumah  kaca  selama  4 bulan.    Pemupukan  dilakukan  seminggu  sekali  setelah  tanaman  berumur  1  bulan  dengan menggunakan hyponek N:P:K (25:5:20) dengan konsentrasi 1 g/l air.
Ekstraksi FMA  dilakukan  untuk  memisahkaan  spora  dari  contoh  tanah  sehingga  dapat dilakukan  identifikasi FMA  guna  mengetahui  genus  spora FMA.    Teknik  yang  digunakan adalah  teknik  tuang – saring  dan  dilanjutkan  dengan  teknik  sentrifugasi  dari  Brundrett et  al. (1996). Prosedur  teknik  tuang-saring  ini,  pertama  adalah  mencampurkan  contoh  tanah sebanyak  50  g  dengan  200-300  ml  air,  lalu  diaduk  sampai  butiran-butiran  tanah  hancur. Selanjutnya  disaring  dalam  satu  set  saringan  dengan  ukuran  500 μ m  dan  45 μ m  secara berurutan  dari  atas  ke  bawah.    Dari  saringan  bagian  atas  disemprot  dengan  air  kran  untuk memudahkan  spora  lolos.    Kemudian  saringan  teratas  dilepas,  dan  sejumlah  tanah  sisa  yang tertinggal pada saringan terbawah dipindahkan ke dalam tabung sentrifuse.
Isolasi  spora  teknik  tuang-saring  ini  kemudian  diikuti  dengan  teknik  sentrifugasi  dari Brundrett et  al. (1996).  Hasil  saringan  dalam  tabung sentrifuse  ditambah  glukosa  60  % dengan  menggunakan  pipet.  Tabung  sentrifuse  ditutup  rapat  dan  disentrifuse  dengan kecepatan 2500 rpm selama 3 menit.  Selanjutnya larutan supernatan tersebut dihisap dengan pipet hisap dan dituang ke dalam saringan 45 μ m, dicuci dengan air mengalir (air kran) untuk menghilangkan  glukosa.  Endapan  yang  tersisa  dalam  saringan  di  atas,  dituangkan  ke  dalam cawan  petri  plastik  dan  kemudian  diperiksa  di  bawah  mikroskop  binokuler  untuk penghitungan spora dan pembuatan preparat guna identifikasi spora FMA yang ada. Kegiatan ini dilakukan 3 kali ulangan pada setiap contoh tanah dari setiap lokasi tegakan tanaman kopi libtujam.
Pembuatan  preparat  spora  menggunakan  bahan  pewarna  Melzer’s    dan  bahan  pengawet PVLG  yang  diletakkan  secara  terpisah  pada  satu  kaca  preparat.    Spora-spora FMA  yang diperoleh  dari  ekstraksi  setelah  dihitung  jumlahnya  diletakkan  dalam  larutan  Melzer’s  dan PVLG.    Selanjutnya  spora-spora  tersebut  dipecahkan  secara  hati-hati  dengan  cara  menekan kaca penutup preparat menggunakan ujung lidi. Preparat diamati dengan mikroskop cahaya pada perbesaran 40-800 kali dan identifikasi dilakukan dengan Manual for the Identification of VA Mycorrhizal Fungi (Almeida & Schenck 1990). Perubahan warna spora dalam larutan Melzer’s adalah salah satu indikator untuk menentukan tipe spora yang ada.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Kepadatan spora FMA per 50 g sampel tanah serta identifikasi tipe spora hasil isolasi atas dasar  karakteristik  morfologi  dan  responnya  terhadap  larutan Melzer’s  pada  contoh  tanah  di rhizosfir tanaman kopi Liberika Tungkal Jambi dicantumkan pada Tabel 1.
Tabel 1.  Jenis spora hasil isolasi dari rizosfir tanaman kopi Libtujam sebelum trapping
Jenis FMA Ciri-Ciri morfologi Reaksi dengan larutan Melzer’s Jumlah spora per 50 g sampel Glomus sp-1 - Bentuk lonjong - Ukuran sedang - Dinding tebal - Warna dinding coklat tua - Warna spora coklat gelap - Tidak mempunyai hyphal attachment
Tidak Bereaksi 8
Glomus sp-2 - Bentuk bulat - Ukuran kecil - Dinding tebal - Warna dinding coklat - Warna spora coklat terang - mempunyai hyphal attachment
Tidak Bereaksi 14 Glomus sp-3 - Bentuk bulat
- Ukuran kecil - Dinding tipis - Warna dinding coklat   muda - Warna spora coklat - Tidak mempunyai hyphal attachment Tidak Bereaksi
22
Glomus sp-4
- Betuk lonjong
- Ukuran kecil - Dinding tipis - Warna dinding coklat  terang - Warna spora coklat
- mempunyai hyphal attachment Tidak Bereaksi 9 Glomus sp-5 - Bentuk bulat
- Ukuran besar - Dinding tipis - Warna dinding kuning  gelap - Warna spora coklat muda - mempunyai hyphal attachment Tidak Bereaksi 11
Glomus sp-6
- Bentuk bulat
- Ukuran kecil
- Dinding tipis - Warna dinding coklat terang - Warna spora kuning tua - Tidak ada hyphal attachment
Tidak Bereaksi 12
Glomus sp-7
- Bentuk lonjong
- Ukuran sedang - Dinding tipis - Warna dinding coklat terang - Warna spora kuning tua - mempunyai hyphal attachment
Tidak Bereaksi
10 Glomus sp-8
- Bentuk bulat
- Ukuran besar - Dinding tebal - Warna dinding coklat - Warna spora coklat tua - ada bekas hyphal attachment
Tidak Bereaksi
23 Glomus sp-9 - Bentuk lonjong - Ukuran sedang - Dinding tebal - Warna dinding coklat tua - Warna spora coklat - Ada bekas hyphal  attachment Tidak Bereaksi 4 Glomus sp-10 - Bentuk lonjong - Ukuran sedang - Dinding tebal - Warna dinding coklat tua - Warna spora coklat gelap - Mempunyai hyphal attachment Tidak Bereaksi 3
Glomus sp-11
- Bentuk bulat - Ukuran besar - Dinding tipis - Warna dinding coklat terang - Warna spora kuning tua - Tidak ada attachment Tidak Bereaksi 172 - Bentuk lonjong - Ukuran sedang - Dinding tipis - Warna dinding coklat terang - Warna spora kuning kecoklatan Tidak Bereaksi 10
Glomus sp-12
- tidak ada attachment
Glomus sp-13 - Bentuk lonjong
- Ukuran sedang
- Dinding tebal - Warna dinding coklat tua - Warna spora coklat gelap - Ada attachment Tidak Bereaksi 43
Acaulospora sp- 1
- Bentuk lonjong
- Ukuran sedang
- Dinding tipis - Warna dinding kuning gelap - Warna spora kuning - Tidak ada attachment
Bereaksi 16 Acaulospora sp- 2
- Bentuk lonjong - Ukuran besar - Dinding tipis - Warna dinding kuning terang - Warna spora kuning - Tidak ada attachment Bereaksi 5
Acaulospora sp-
3 - Bentuk lonjong - Ukuran sedang - Dinding tipis - Warna dinding kuning bening - Warna spora kuning terang - tidak ada attachment Bereaksi 11
Berdasarkan Tabel 1 terlihat bahwa jenis isolat FMA yang ditemukan di rizosfir tanaman kopi  Libtujam  hanya  ada  2  genus  yaitu  genus  Glomus  dan  Acaulospora.    Genus  Glomus mendominasi daerah rhizosfir kopi Libtujam yaitu ada 13 jenis (Glomus sp1- sampai Glomus sp-13), sesangkan genus Acaulospora hanya ada 3 jneis (Acaluspora sp-1, Acaulospora sp-2 dan Acaulospora  sp-3). Hal  ini  berhubungan  dengan  waktu  pengambilan  sampel  tanah  dan pada  saat  pengambilan  sampel  untuk  identifikasi . Kemungkinan  pada  saat  pengambilan sampel  tanah  untuk trapping itu  hanya  ada  propagul  Glomus  dan  Acaulospora  yang  ada, demikian  juga  saat    pengambilan    sampel  tanah  dari  hasil trapping,  sebab  keberadaan  dan keanekaragaman FMA dipengaruhi oleh faktor lingkungan dan tanaman inang.  Kemungkinan lain  adalah  ada  beberapa  genus  FMA  yang  terbatas    penyebarannya  sehingga  kemungkinan genus  spora  yang  ditemukan    dari  suatu  jenis  tanah  pada  suatu  wilayah    pada  suatu  waktu tertentu mungkin tidak mewakili seluruh spora yang ada dari genus FMA yang ada di daerah tersebut.
Di rhizosfir tanaman kopi Libtujam ini ternyata genus Glomus yang mendominasi. Seperti halnya  hasil  penelitian  Allen  &  Cunningham  (1983),  Pond et  al.  (1984),  Ragupathy  & Mahadevan (1991) dan Purwanto (1999) menunjukkan bahwa jenis Glomus lebih beradaptasi
dibandingkan  genus  yang  lain  terhadap  kisaran  keadaan  lingkungan  yang  luas.    Hasil penelitian  Kartika,  Lizawati  dan  Hamzah  (2009)  serta  Kartika  (2006)  juga  menunjukkan bahwa genus Glomus yang mendominasi di tanah PMK bekas kebun karet dan tanah gambut bekas hutan primer.
Populasi dan keanekaragaman FMA pada tanah-tanah mineral masam di Indonesia cukup tinggi,  tetapi  umumnya  didominasi  oleh  genus  Glomus, Acaulospora,  Gigaspora  dan Scutellospora . Beberapa penelitian menunjukkan bahwa setiap jenis tanah dan jenis tanaman memiliki  jenis  FMA  yang  berbeda,  seperti  di  pulau  Jawa  dan  Bali  ditemukan Acaulospora walkeri yang berasosiasi dengan tanaman kakao (Kramadibrata & Hedger 1990), pada tanah masam  di Pondok  Gede,  Layung  Sari,  dan  Cimatis  yang  ditumbuhi  alang-alang,  jagung  dan kakao  ditemukan  Acaulospora,  Gigaspora,  Glomus  dan  Scutellospora  (Widiastuti  & Kramadibrata, 1992), serta di perkebunan kelapa sawit di Sumatera Utara ditemukan Glomus spp., Acaulospora sp., Gigaspora sp. dan Scutellospora sp. (Puspa & Suwandi 1990).
Kepadatan spora per 50 g sampel tanah yang tercantum pada Tabel 1 di atas ternyata jenis Glomus  sp-11 memiliki  kepadatan  spora  tertinggi  yaitu  172  buah  dibandingkan  jenis  FMA yang lainnya.  Hal ini menunjukkan bahwa Glomus sp-11 memiliki daya adaptasi yang lebih baik dibandingkan jenis Glomus yang lain.
Jumlah  spora  dari  setiap  jenis  FMA  di  rhizosfir  kopi  Libtujam  ternyata  sangat  bervariasi Berkurangnya  jumlah  spora pada  suatu  jenis  tanah  disebabkan  oleh  perbedaan  lingkungan, musim  waktu  pengambilan  contoh  tanah,  jenis  tanaman  inang . Menurut  hasil  penelitian Safari  (2006),  sistem  manajemen  atau  pengelolaan  tanah,  adanya  tanaman  penutup  tanah, kandungan lumpur, dan ketersediaan P merupakan faktor utama  yang mempengaruhi jumlah spora.
Jumlah  FMA  di  tanah  pertanian  bervariasi  tergantung  musim  setiap  tahun  dan  juga tergantung  beberapa  faktor  seperti  pertumbuhan  tanaman,  faktor  edafik,  pola  cuaca  setiap musim dan pengelolaan (pemupukan, cara pemupukan dan pe-ngolahan tanah). Seperti halnya hasil  penelitian  Giovannetti  (1985)  dan  Sturmer  &  Bellei  (1994)  yang  mendapatkan  bahwa jumlah spora atau frekuensi sporulasi FMA bervariasi sesuai musim.

## KESIMPULAN
a). Kepadatan  spora  per  50  g  sampel  tanah dari  tegakan  tanaman  kopi  Liberika  Tungkal Jambi, ternyata jenis Glomus sp-11 memiliki kepadatan spora tertinggi  yaitu 172 buah dibandingkan jenis FMA yang lainnya.
b). Hasil isolasi atas dasar karakteristik morfologi dan responnya terhadap larutan Melzer’s pada contoh tanah di rhizosfir tanaman kopi Liberika Tungkal Jambi ditemukan 2 genus spora yaitu  Glomus dan Acaulospora.

## DAFTAR PUSTAKA
Allen EB, Cunningham GL.  1983.  Effects of vesicular-arbuscular mycorrhizae on Distichlis spicata under three salinity levels.  New Phytol. 93 : 227-236.
Delvian.  2006.  “Peranan  Ekologi  dan  Agronomi  Cendawan  Mikoriza Arbuskula”. USU Repositor : Sumatra Utara. 24 p.
Fortuna,  P.,  A.  S.  Citernesi,    S.  Morini,  C.  Vitagliano,  M. Giovannetti.  1996. Influence  of Arbuscular  Mycorhizae  and  Phosphate  Fertilization  on  Shoot  Apical  Growht  of Micropropagated Apple and Plum Rootstock. Tree Physiol. Vol. 16(9): 757-763.
Giovannetti  M.    1985.    Seasonal  variation  of  vesicular-arbuscular  mycorrhizas  and  endo gonaceous spores in a maritime sand dune.  Trans. Br. Mycol.Soc. 84:679-684.
Kartika,  E.    2006. Isolasi,  karakterisasi  dan  pengujian  keefektivan  cendawan  mikoriza arbuskular  terhadap  bibit  kelapa  sawit  pada  tanah  gambut  bekas  hutan.      Jurnal Agronomi 10 (2) : 63-70.
Kartika,  E.,  Lizawati  dan  Hamzah.    2010.  Isolasi,  karakterisasi  dan  pemurnian  cendawan mikoriza  arbuskular  dari  tanah  bekas  tambang  batu  bara.    Prosiding  Seminar  Nasional MKTI. Jambi. 24-25 November 2010.
Kramadibrata K, Hedger JN. 1990. A New Species of Acaulospora assosiated with cocoa in Java and Bali (Indonesia). Mycotaxon 37 : 73-77.
Marschner H. 1998. Mineral Nutrition of Higher  Plants. London: Academic Press Pond EC, Menge  JA,  Jarrell  WM.    1984.    Improved  growth  of  tomato  in  salinized  soil  by vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi collected from salin soils.  Mcology 76 : 74-84.
Pang  P  C.,  E  A  Paul.  1980.    Effect  of  VAM  on 14 C  And 15 N  distribution  in nodulated fababeans. Journal Soil. 60 : 241-249.
Purwanto  A.  1999.  Studi hubungan  salinitas  dengan  kelimpahan  CMA  pada  lahan  hutan pantai dan hutan mangrove di Cagar alam Leuweung Sancang Kab. Garut Jawa Barat. Skripsi. Jurusan Manajemen Hutan, Fak. Kehutanan, IPB.
Puspa W, Suwandi. 1990. Pemanfaatan mikoriza vesikula-arbuskula pada perkebunan kelapa sawit (Elaeis guineensis). Bull. Puslitbun. Marihat 10 : 5-13.
Noor M. 2000. Pertanian Lahan Gambut Potensi dan Kendala, Penerbit Kanisius, Yogyakarta Ragupathy  S,  Mahadevan  A.    1991.    VAM  distribution  influenced  by  salinity  gradient  in  a coastal  tropical  forest.    Hal  :  91-97.    Di  dalam  :  Soerianegara  and  Supriyanto  (Eds.). Proceed. Of second Asian Conference on Mycorrhiza.  BIOTROP Special Publication. No. 42 SEAMEO BIOTROP Bogor.
Safari, A.A. 2006. Relationships Between land Use and Arbuscular Mycorrhizal
(AM)  Spore  Abundance  in  Calcareous  Soil. Caspian  J.  Env.  Sci.,  Vol.  4  No.1  pp.
59~65
Sagiman  S.  2007.  Pemanfaatan  Lahan  Gambut  dengan  Perspektif  Pertanian Berkelanjutan. Fakultas Pertanian Universitas Tanjungpura, Pontianak.
Sturmer SL and Bellei MM.  1994.  Composition and seasonal variation pf spore population of  arbuscular  mycorrhizal  fungi  in  dune  soils  on  the  island  of  Santa  Catarina,  Brazil. Mycol.Res. 98:453-457.
Widiastuti H, Kramadibrata K. 1992. Jamur mikoriza bervesikula-arbuskula di beberapa tanah masam dari Jawa Barat. Menara Perkebunan 60 (1) : 9-19.