## Potensi Antibakteri Beberapa Tumbuhan Obat Tradisional
(Antibacterial potential of some medicinal plants)
Risa Nursanty 1) , Zumaidar 2)
1),2) Jurusan Biologi FMIPA Unsyiah Darussalam-Banda Aceh E-mail: nursanty01@yahoo.co.id

## Abstract
The research of antibacterial ability from Anacardium occidentale (Anacardiaceae), Lawsonia inermis (Lythraceae), Averrhoa bilimbi, Averrhoa carambola (Oxalidaceae), Capsicum frutescens and Solanum  torvum (Solanaceae)  to Escherichia  coli ATCC  25922  and Staphylococcus    aureus ATCC 29213 was  done  from  Mei  until  November  2010  at  Microbiology  laboratory,  Natural  Science,  Syiah Kuala University. Leave and barks extracts of plant was soluted using n-Hexane solution. Antibacterial activities  was  tested  by  using diffusion  method  with  each  concentrations  10%,  20%,  and  30%.  The result showed that plants leaves and barks had ability to inhibit the growth of Staphylococcus  aureus ATCC  29213.  The  largest  of  inhibition  zone  was  formed  by L.  inermis leaves  extract  in  6 mm. Meanwhile C. frutescens barks extract was showed inhibition zone in 5 mm.
Key Words: Medicinal  plants,  antibacterial, Escherichia  coli  ATCC  25922  and  Staphylococcus aureus ATCC 29213

## PENDAHULUAN
Indonesia sebagai negara tropis memiliki  kekayaan  akan  flora.  Begitupula halnya propinsi Aceh yang dikelilingi beranekaragam  flora  berkhasiat,  diantaranya sebagai  tanaman  obat.    Kearifan  budaya  lokal secara tidak langsung telah menjaga kelestarian tumbuhan  obat (Muharso,  2000). Pengetahuan masyarakat lokal akan etnobotani dalam bidang obat-obatan (farmakologi) telah menjadi sumber kajian bagi bidang medis modern. Pada tiga  dasawarsa  terakhir  popularitas  obat  bahan alam  mengalami  peningkatan  baik  di  negara maju  maupun  berkembang.  Hal  ini  disebabkan telah  meningkatnya  kepedulian  terhadap  efek samping  yang  diakibatkan  oleh  obat  sintetis. Selain itu juga meningkatnya penderita penyakit degeneratif dan kronis yag membutuhkan  pengobatan  dengan  jangka waktu  lama.  Sehingga  penggunaan  obat  herbal lebih  diminati  karena  selain  lebih  aman  juga relatif lebih murah (Hamid, 2009).
Hasil penelitian Amalia dan  Zumaidar (2007),  di  Kabupaten  Pidie  mendapatkan beberapa  khasiat  dari  sejumlah  jenis  tumbuhan berdasarkan  kajian  etnobotaninya. Beberapa jenis  yang  dominan  penggunaannya yaitu: Anacardium occidentale (suku Anacardiaceae), Lawsonia inermis (suku  Lythraceae), Averrhoa bilimbi, Averrhoa carambola (suku
Oxalidaceae),
Capsicum frutescens dan
Solanum torvum
(suku Solanaceae). Anacardium  occidentale atau  dikenal  dengan nama lokal jambu mete maupun jambu monyet digunakan  oleh  masyarakat  Pidie  untuk mengobati  sakit  gigi.  Menurut  de  Padua, (1999),  tanaman  pacar  kuku  (Lawsonia inermis)  berkhasiat  menyembuhkan  penyakit kuning.  Tjitrosoepomo  (2000)  menyatakan, Averrhoa bilimbi atau dikenal sebagai belimbing  wuluh  dan Averrhoa  carambola (belimbing  manis)  telah  dikenal  luas  memiliki khasiat  menyembuhkan  berbagai  penyakit seperti hipertensi, antiradang, dan menghilangkan panas. Anggota suku Solanaceae  seperti  cabai  rawit  (Capsicum frutescens)  dan  rimbang  (Solanum  torvum) banyak digunakan masyarakat untuk mengobati penyakit kulit.
Tumbuhan  obat  perlu  ditingkatkan perannya  menjadi  bahan  fitofarmaka  sehingga tidak  hanya  sebatas  ramuan  jamu  tradisional. Untuk  itu  perlu  dilakukan  berbagai  tahapan penelitian yang mendukung pengembangan dan peningkatan tanaman obat tersebut. Sehinggnya  akhirnya  nanti  dapat  menjadi komoditi  unggul  yang  memiliki  multi  manfaat. Beberapa  penelitian  telah  dilakukan  untuk mengetahui  kemampuan  antibakteri  jambu mete  oleh  Yusuf et  al.  (2009);  Dahoke et  al. (2009),  pacar  kuku  (Babu,  2009),  belimbing
wuluh  (Zakaria et  al.  2007),  dan  cabai  rawit (Cowan,  1999). Berdasarkan  uraian  di  atas menarik  untuk  dilakukan  uji  antibakteri terhadap Escherichia  coli ATCC  25922    dan
Staphylococcus
aureus
ATCC 29213
menggunakan  ekstrak  n-Heksana  dari  organ daun  dan  batang  tumbuhan A.  occidentale, L. inermis, A. bilimbi, A. carambola, C. frutescens dan S. torvum.

## METODE PENELITIAN
Tempat Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Mikrobiologi Fakultas
Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan  Alam,
Unsyiah.

## Alat dan Bahan
Peralatan  yang    digunakan adalah seperangkat  alat  destilasi  uap, alat-alat  gelas yang umum digunakan di laboratorium Mikrobiologi, pemanas, bunsen, rotary evaporator, pisau, jarum inokulasi,  pinset, gunting tanaman, spatula, dan inkubator.
Bahan  yang  digunakan  adalah organ daun  dan  batang tumbuhan A. occidentale, L. inermis, A. bilimbi, A. carambola, C. frutescens dan S. torvum yang  berasal  dari  daerah  Aceh Besar. Isolat  uji digunakan Escherichia coli ATCC  25922, dan Staphylococcus  aureus ATCC  29213  yang  berasal  dari laboratorium
Mikrobiologi Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan Kementrian Kesehatan  RI,  Jakarta.  Bahan-bahan  lainnya adalah  kertas  saring,  alkohol  70%,  N-Heksana, larutan garam fisiologis 0,85%, aquades, kertas cakram berukuran  6  mm  (OXOID), media MHA  (Mueller  Hinton  Agar), media  NA (Nutrien  Agar) dan kertas  cakram  yang mengandung antibiotik ampisilin (OXOID).
Cara Kerja a. Ekstraksi
Bagian  tumbuhan  yang digunakan untuk  uji  daya  hambat  adalah  organ  daun  dan batang  dari  tumbuhan A. occidentale, L. inermis, A. bilimbi, A. carambola, C. frutescens dan S. torvum. Sampel  dikeringanginkan  pada suhu kamar, dan ditimbang 500 gr kemudian di maserasi (direndam) dengan n-Heksana sebanyak  400  ml. Kemudian  ditutup  dengan kertas alumunium  foil dan disimpan  selama 48 jam.  Kemudian  hasil  maserasi  disaring  dengan
menggunakan  corong  kaca  dan  kertas  saring sampai ampasnya terpisah. Selanjutnya dimasukkan  dalam  labu  untuk  dievaporasi (diuapkan)  menggunakan  alat vacum  rotary evaporator hingga  diperoleh  ekstrak    kental (Harborne,  1987).  Ekstrak  yang  diperoleh dijadikan  larutan  stok  dengan  konsentrasi 100%, kemudian diencerkan sehingga diperoleh larutan dengan konsentrasi 10%, 20% dan 30%.

## b. Uji Antibakterial
Selanjutnya
masing-masing konsentrasi  ekstrak  tersebut  di  uji  hayati terhadap  bakteri E.  coli ATCC  25922, dan S. aureus ATCC  29213. Pengujian  dilakukan dengan  metode  Kirby-Bauer  menggunakan kertas cakram (Madigan et al. 2003). Media uji menggunakan  media Mueller  Hinton  Agar (MHA).  Suspensi  bakteri  yang  digunakan sebanyak 0,1 ml yang telah disetarakan dengan standar  0,5  Mc  Farland  (McF).  Media  MHA pertama dibagi  menjadi 3 bagian  yang  masing- masing  diletakkan  cakram  yang  berisi  ekstrak n-heksan  tumbuhan  pada  media  dengan konsentrasi (A : 30 %, B : 20 %, C : 10 %) pada daerah  yang  berbeda. Cakram  yang  berisi kontrol positif (ampisilin sebagai obat antibiotik) diletakkan  pada  media  lainnya  dengan  kontrol negatif  (0%)  pada  daerah  yang  berbeda  (D  dan E).  Selanjutnya  media  diinkubasi  pada  suhu  37 o C selama 24 jam dan diamati terbentuknya zona hambat    disekitar  kertas  cakram.  Zona  hambat yang  terbentuk  kemudian  diukur  diameternya menggunakan penggaris dalam satuan milimeter. Besarnya diameter zona hambat diukur berdasarkan  seluruh  diameter  zona  bening dikurangi  diameter kertas  cakram  (Tokasaya, 2010).

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Ekstrak n-Heksana  daun dan  batang A.occidentale, L.  inermis, A. bilimbi,  A. carambola, C. frutescens dan S. torvum menunjukkan  kemampuan  antibakteri terhadap S.  aureus ATCC  29213  dan  tidak  terhadap E. coli ATCC 25922. Zona  hambat  tersebut dihasilkan akibat pemberian ekstrak n-Heksana daun L.  inermis, A. bilimbi,  A. carambola dan S. torvum (Tabel  1.).  Sedangkan  ekstrak  n- Heksana batang  yang  memiliki  kemampuan antibakteri  adalah C.  frutescens, S.  torvum,  A. occidentale, dan A. bilimbi (Tabel 2).
Ekstrak  n-Heksana  daun L.  inermis dengan  konsentrasi  30%  membentuk zona hambat  terbesar  yakni  6  mm dibandingkan ekstrak  lainnya.  Akan  tetapi  jika  dibandingkan dengan  kontrol  positif  (ampisilin),    diameter zona  hambat tersebut  kecil. Diameter  zona hambat  yang  terbentuk  pada  kontrol  positif sebesar  15  mm. Jika  kriteria  daya hambatan antibakteri  yang  diuji  mengacu  pada  Tokasaya (2010),  maka kontrol  positif memiliki aktivitas antibakteri  yang kuat sedangkan  ekstrak n- Heksana daun L. inermis tergolong sedang.
Beberapa penelitian menghasilkan temuan  yang  juga  sama  terhadap  adanya aktivitas  antibakteri    tumbuhan L.  inermis.
Hasil  penelitian  Satish  (2008), menggunakan metode
difusi agar memperlihatkan kemampuan antibakteri ekstrak daun L. inermis terhadap  bakteri  patogen  pada  manusia. Pemberian  sebanyak  50  µl  ekstrak  air  daun L. inermis terhadap S.  aureus menghasilkan  zona hambat antara  9 – 17,5 mm.  Hasil yang sama juga  ditemukan  pada  penelitian Sukanya et  al. (2009),  bahwa  ekstrak  air  daun L.  inermis menghasilkan  zona  hambat    sebesar    6  mm terhadap S.  aureus patogen.  Sebaliknya  pada E.  coli tidak  menunjukkan  adanya  aktivitas antibateri.
Kemampuan  antibakteri  yang  dimiliki L. inermis dimungkinkan oleh adanya kandungan Gallic  acid dan Lawsone. Gallic acid yang merupakan turunan phenol. Senyawa phenol  menghambat  pertumbuhan  mikroba dengan  cara menginaktivasi  enzim-enzim  dan merusak  dinding  sel  (Cowan,  1999).  Akibat terganggunya  sintesa  protein  dan  dinding  sel yang  tidak  sempurna  maka  sel  tidak  mampu menahan  tekanan  osmosis  sehingga  lama kelamaan sel bakteri akan mati (Madigan et al., 2003).  Senyawa Lawsone merupakan  turunan
quinon yang juga berpotensi sebagai antimikrob.  Sasaran  target  senyawa  ini  pada bagian  dinding  sel  mikroba.  Quinon  dapat membentuk  kompleks  irreversibel  pada  bagian nukleofilik  asam  amino.  Kondisi  ini  akan menginaktivasi protein sel sehingga tidak dapat berfungsi secara normal (Cowan, 1999).
Ekstrak n-Heksana batang C. frutescens menghasilkan diameter zona hambat sebesar 5 mm, lebih besar dibandingkan ekstrak lainnya. Akan tetapi diameter tersebut kecil jika dibandingkan  kontrol  positif  (ampisilin) yakni 15  mm. Sehingga aktivitas hambatan  ekstrak n-Heksana  batang C.  frutescens jika  mengacu kepada  pendapat  Tokasaya  (2010)  tergolong lemah.
Kemampuan C.    frutescens dalam menghambat  pertumbuhan S.  aureus ATCC 29213 dimungkinkan karena adanya kandungan zat capsaicin yang merupakan turunan terpenoid.  Golongan  terpenoid  merupakan metabolit  sekunder  yang  berpotensi  sebagai antimikroba dan juga antiprotozoa. Mekanisme antibakteri  yang  dimiliki capsaicin bekerja dengan  cara  mengganggu  sintesis  membran  sel (Cowan, 1999). Sehingga dengan dikacaukannya    struktur  membran  maka  sel menjadi sangat permeabel, yang mengakibatkan isi  sitoplasma  akan  mudah  keluar.  Kondisi  ini tentunya  akan  menjadikan  sel bakteri  tidak dapat  bertahan lama  sehingga  akhirnya  akan mati (Madigan et al., 2003).
Perbedaan  aktivitas  antibakteri  yang ditunjukkan  oleh  ekstrak  n-Heksana  daun  dan batang  dari  ke-enam  tumbuhan  obat  terpilih tersebut  dapat  dimungkinkan  oleh  banyak faktor.  Hal  ini  diungkapkan  Maquire  (2000) bahwa  jenis  antibakteri  (konsentrasi  dan polaritas),  jenis  bakteri  dan  cara  pengujian dapat mempengaruhi aktivitas antibakteri.
Tabel 1 Diameter  zona  hambat  (mm) yang  terbentuk  akibat  pemberian ekstrak  n-Heksana daun A. occidentale, L.  inermis,  A.  bilimbi,  A.  carambola,  S.  torvum dan C.  frutescens terhadap pertumbuhan S.aureus ATCC 29213 No Tumbuhan Diameter zona hambat (mm) Konsentrasi (%) Kontrol Positif 0 10 20 30 (ampisilin) 1. Anacardium occidentale 0 0 0 0 15 2. Lawsonia inermis 0 4 5 6 15 3. Averrhoa bilimbi 0 0 1,5 2 15 4. Averrhoa carambola 0 1,5 2           3 15 5. Solanum torvum 0 0 0 1,5 15 6. Capsicum frutescens 0 0 0 0 15
Tabel 2 Diameter zona hambat (mm) ekstrak n-Heksana batang A. occidentale, L.inermis, A. bilimbi, A. carambola, S. torvum dan C. frutescens terhadap pertumbuhan S. aureus ATCC 29213
No Tumbuhan Diameter zona hambat (mm) Konsentrasi (%) Kontrol Positif 0 10 20 30 (ampisilin) 1. Anacardium occidentale 0 1,5 1,8 3 15 2. Lawsonia inermis 0 0 0 0 15 3. Averrhoa bilimbi 0 0,8 1 3 15 4. Averrhoa carambola 0 0 0           0 15 5. Solanum torvum 0 1,5 2,5 4 15 6. Capsicum frutescens 0 2 4 5 15

## SIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan:
1. Ekstrak  n-Heksana  daun  dan  batang tumbuhan A.  occidentale, L.  inermis, A.  bilimbi,  A.  carambola,  S.  torvum dan C.  frutescens hanya  memiliki kemampuan antibakteri terhadap Staphylococcus aureus ATCC 29213
2. Ekstrak  n-Heksana  daun L.  inermis dan batang C. frutescens dapat menghasilkan diameter  zona  hambat  masing-masing sebesar 6 mm dan 5 mm.

## SARAN
Diperlukan uji lanjut terhadap kemampuan daya hambat  daun L. inermis dan batang C.capsicum pada  mikroba  patogen lainnya.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penulis  mengucapkan  terima  kasih  kepada  I- MHERE  Batch  II  atas  bantuan  dana dan  juga kepada  Mariani,  Rima,  Nanda  dan  Maya sehingga penelitian ini dapat terlaksana dengan baik.

## DAFTAR PUSTAKA
Amalia dan Zumaidar. 2007. Kearifan Tradisional  Masyarakat  Pidie  dalam Pemanfaatan  Tumbuhan  Obat. Laporan Penelitian. Jurusan  Biologi,  FMIPA Unsyiah.
Babu,  P.  D.,  and  R.  S.  Subhasree.  2009. Antimicrobial  activities  of Lawsonia inermis – a review. Academic Journal of Plant Sciences. 2  (4) : 231-232
Cowan,  M.  M.  1999.  Plant  products  as microbial  agents. Clinical  Microbial
Review. 12 (4): 564-582.
Dahake,  A.  P.,  V.  D.  Joshi  and  A.  B.  Joshi. 2009. Antibacterial screening of different extract of Anacardium ocidentale Linn.  leaves. Int.  Journal  of ChemTech Research. 1 (4) : 40-43.
de Padua L.S., N. Bunyapraphatsara, and R. H. M. J. Lemmens. 1999. Plant Resource of South-East Asia No.12 (1); Medical and Poisonous  Plant. Backhuys  Publishers, Leiden the Nedherlands.
Hamid,  A.  F.  2009.  Pengembangan  Farmasi
Berbasis Tanaman Obat untuk Pemberdayaan dan Peningkatan Kesejahteraan.  International  Seminar and Workshop Research and Development  of  Herbal  Medicine  for Community, Empowerment and controlling  Tropical  Diseases.  Syiah Kuala University, Banda Aceh, Indonesia. December 23 rd 2009. Harborne,  J.  B.  1987. Metode  Fitokimia: Penuntun  Cara  Modern Menganalisa Tumbuhan. Terjemahan
dari Phytochemical  Methods  oleh  Kosasih
Padmawinata  dan  I.  Soediro.  Penerbit
ITB, Bandung.
Madigan, M. T.,  J. M. Martinko, and J. Parker. 2003. Brock  Biology  of Microorganism,
10 th ed., Prentice Hall, New Jersey.
Maguire,  M.  2000.  Re:how  do  essensial  oil interact  with  bacteria  to  suppress bacterial
growth?
MadSci
Network:Biochemistry. Webad min@www.madsci.org. Diakses Tanggal 10 Oktober 2010. Muharso, 2000. Kebijakan Pemanfaatan Tumbuhan  Obat  Indonesia. Makalah
seminar ”Tumbuhan Obat di Indonesia”,
Kerjasama  Indonesia  Resource  Centre for  Indigenous  Knowledge  (INTRIK),
Unversitas Pajajaran dan Yayasan Ciungwanara  dengan  Yayasan  Kehati. 26-27 April 2000.
Satish,  S.,  M.  P.  Raghavendra  and  K.  A. Raveesha. 2008. Evaluation of antibacterial  potential  of  some  plants agent human pathogenic bacteria.
Advances  in  Biological  Research.  2  (3- 4) : 44-48.
Sukanya, L. S., J. Sudisha, P. hariprasad, S. R. Niranjana,  H.  S.  Prakash,  and  S.  K.
Fathima. 2009. Antimicrobial activity of leaf  extracts  of  indian  medicinal  plants againts  clinical  and  phytopathogenic bacteria. African Journal of
Biotechnology. 8 (23) : 6677-6682.
Tokasaya. P. 2010. Sponge-Associated Bacteria Producing Antimicrobial Coumponds and Their Genetic Diversity  Analysis.  Graduate  School. Bogor Agricultural University. Bogor. Tjitrosoepomo, G. 2000. Taksonomi Tumbuhan Spermatophyta. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta.
Yusuf, Q. M., M. Aliyu, and R. Ndanusa. 2009. Effect of aqueous extract of Anacardium occidentale (L.)  stem  bark  on  sodium and  chloride  transport  in  the  rabbit colon. Journal  of  Medicine  Plants
Research. 3 (6) : 493-497.
Zakaria, Z. A., H. Zaiton, E. F. P. Henie, A. M. M.  Jais,  and  E.  N.  H.  E.  Zainuddin. 2007.  In  vitro  antibacterial  activity  of Averrhoa  bilimbi L.  leaves  and  fruits extracts. Int.  Journal  of  Tropical Medicine. 2 (3) : 96-100.