## SELEKSI BAKTERI ENDOFIT DARI AKAR TANAMAN
OKRA ( Abelmoschus esculantus ) SEBAGAI AGENS

## BIOKONTROL Fusarium oxysporum
Selection of Endophytic Bacteria from Root of Okra ( Abelmoschus esculantus ) as a Biocontrol of Fusarium
oxysporum
Evan Purnama Ramdan 1* Ely Lailatul Maghfiroh 2 Reni Rinika 2 Abdul Munif 2
1 Program Studi Agroteknologi, Fakultas Teknologi Industri, Universitas Gunadarma
2 Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, IPB University
DOI: http://dx.doi.org/10.21111/agrotech.v7i1.4545
Terima  20 Juni 2020                       Revisi 19 Oktober  2020                           Terbit 7 Januari  2021
Abstrak: Okra telah menjadi salah satu sayuran penting di Indonesia, sehingga upaya  peningkatan  produksi  perlu  ditingkatan.  Salah  satu  faktor  pembatasnya yaitu  serangan  patogen  tular  tanah  yang  sulit  dikendalikan.  Oleh  karena  itu, pengendalian  alternatif  lain  perlu  dikaji.  Pada  penelitian  ini  akan  dilakukan seleksi terhadap bakteri endofit perakaran okra yang berpotensi mengendalikan Fusarium  oxysporum .  Isolasi  bakteri  endofit  berasal  dari  perakaran  tanaman okra yang kemudian dikarakterisasi morfospesies dan diuji keamanan hayatinya dengan  uji  haemolisis  dan  hipersensitif.  Uji dual  culture dilakukan  untuk memperoleh  bakteri  endofit  yang  berpotensi  sebagai  agens  biokontrol  dengan mengamati  pembentukan  zona  hambat.  Selain  itu  daya  hambat  bakteri  endofit juga  dihitung.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  diperoleh  9  isolat  bakteri endofit  dari  perakaran  okra.  Seleksi  dengan  uji  haemolisis  dan  hipersensitif menunjukkan  ada  3  isolat  yang  aman  secara  hayati.  Pada  pengujian  lanjutan, dari  3  isolat  diperoleh  1  isolat  terbaik  (AOB3)  yang  mampu  menghambat
* Korespondensi email: evan_ramdan@staff.gunadarma.ac.id
Alamat : Program Studi Agroteknologi, Fakultas Teknologi Industri, Universitas Gunadarma Jl. Margonda Raya No. 100, Pondok Cina, Beji, Depok, Jawa Barat 16424
pertumbuhan F. oxysporum dengan efikasi 19.3% dan membentuk zona hambat sebagai ciri mekanisme antibiosis.
Kata kunci : Agens hayati, antibiosis, patogen tular tanah, uji dual culture
Abstract: Okra has become one of the most important vegetables in Indonesia, in which its production need to be increased. One limiting factor is the attack of soil-borne  pathogens  that  are  difficult  to  control.  Therefore,  new  alternative controls  need to be assessed. In this research,  several  endophytic bacteria were isolated  and  tested  for  their  potency  as  control  of Fusarium  oxysporum . Isolation  of  endophytic  bacteria  was  derived  from  roots  of  okra  plants  which were  then  characterized  by  morphospecies  and  tested  for  their  safety  by haemolysis  and  hypersensitivity  tests.  A  dual  culture  test  was  performed  to obtain endophytic bacteria that have potential as biocontrol agents by observing formation  of  inhibitory  zones.  In  addition,  inhibitory  properties  of  endophytic bacteria  were  also  calculated.  The  results  showed  that  nine  isolates  of endophytic bacteria were obtained from okra roots. Selection by haemolysis and hypersensitivity  tests  showed  that  there  were  three  isolates  that  were biologically  safe.  In  further  testing,  one  of  the  three  obtained  isolates  (AOB3) was  considered  the  best  in  inhibit F . oxysporum growth  with  an  efficacy  of 19.3%, and form an inhibitory zone as a characteristic of antibiotic mechanism.
Key words : Antibiosis, biological agent, dual culture test, soil-borne pathogen

## 1. Pendahuluan
Okra  ( Abelmoschus  esculantus )  merupakan  tanaman  sayuran penting yang tumbuh di seluruh belahan dunia (Athar dan Bokhari 2006)  termasuk  Indonesia.  Umumnya  okra  dikonsumsi  sebagai sayuran  dari  bagian  buah  muda  baik  dalam  bentuk  segar  (direbus atau  digoreng)  atau  dalam  bentuk  kering.  Adapun  manfaat  dari okra  yaitu ketersediaan serat yang tinggi  dalam bentuk lendir dan peptin  yang  membantu  menurunkan  kadar  kolesterol  dan mengurangi  resiko  penyakit  jantung  (Sanwal et  al .  2007).
Tanaman  ini  membutuhkan  musim  hujan  yang  hangat  dan  suhu yang tinggi (Afzal et al . 2013). Berbagai penelitian telah dilakukan
untuk  meningkatkan  pertumbuhan  okra  seperti  melalui  berbagai jenis  dan  dosis  pupuk  baik  yang  organik  dan  non-organik  serta PGPR  (Adekiya et  al .  2019;  Rustiawan et  al .  2017;  Arifa et  al .
2019;  Christy et  al .  2020).  Selain  kegiatan  budidaya,  adanya serangan  patogen  tular  tanah  seperti Macrophomina  phaseolina,
Rhizoctonia solani, Fusarium spp., and Meloidogyne spp., the root knot  nematodes (Ehteshamul-Haque et  al. 1996;  Sultana et  al.
2005) menjadi faktor pembatas produksi okra.
Kebanyakan  patogen  tular  tanah  sulit  untuk  dikendalikan menggunakan  strategi  konvensional  seperti  penggunaan  kultivar resisten  maupun  fungsida  sintetik  (Weller et  al. 2002),  sehingga diperlukan  alternatif  pengendalian  seperti  menggunakan  bakteri endofit. Bakteri endofit yaitu bakteri yang hidup di dalam jaringan tanaman  tanpa  menyebabkan  kerugian  maupun  mendapatkan manfaat  dari  residensi  lainnya  (Kobayasi  dan  Palumbo  2000). Berbagai  penelitian  telah  dilakukan  hingga  saat  ini  untuk mengidentifikasi  hubungan  menguntungkan  dengan  penggunakan bakteri endofit dalam proteksi tanaman (Siddiqui dan Ehteshamul- Haque 2001; Hallmann et al. , 1998; Tariq et al . 2009). Selain itu, endofit  juga  memacu  pertumbuhan  tanaman  dengan  sejumlah mekanisme, seperti aktivitas pelarut fosfat (Altomare et al., 1999), produksi  IAA  (Tariq et  al. 2009),  dan  produksi  siderofor  (Leong
1986).
Asosiasi  endofit  pada  okra  dari  kelompok Pseudomonas dan Trichoderma telah  dilaporkan  oleh  Afzal et  al .  (2013).  Kedua kelompok tersebut telah mampu menekan nematoda puru akar, R. solani , M. phaseiolina, F. solani, M. javanika (Afzal et al . 2013).
Meskipun  demikian,  endofit  pada  okra  masih  terbuka  luas  untuk dieksplorasi lebih banyak lagi. Selain kelompok Pseudomonas dan Trichoderma ,  masih  banyak  spesies  endofit  lainnya  yang  dapat diperoleh  dan  dipelajari  fungsionalnya,  khususnya  sebagai  agens biokontrol  penyakit  tanaman.  Adapun  penelitian  ini  bertujuan untuk  mendapatkan  isolat  bakteri  endofit  yang  mempunyai kemampuan sebagai agens biokontrol terhadap F. oxysforum .

## 2. Bahan dan Metode

## Isolasi Bakteri Endofit
Bakteri  endofit  diisolasi  dari  perakaran  tanaman  okra  yang diambil dari kebun Agribusiness and Technology Park (ATP), IPB University.  Isolasi  bakteri  endofit  dilakukan  mengikuti  metode Mardhiana et  al. (2017)  yang  dimodifikasi.  Akar  tanaman  okra kemudian  dicuci  dengan  air  mengalir  untuk  menghilangkan  tanah yang  menempel,  kemudian  dikering-anginkan.  Selanjutnya ditimbang  sebanyak  1  g  akar  tanaman  okra  dan  disterilkan permukaannya  menggunakan  alkohol  70%  selama  35  detik, kemudian direndam dalam larutan NaOCl 3% selama 35 detik, lalu dibilas  dengan  akuades  steril  sebanyak  3  kali.  Akar  yang  sudah
disterilkan kemudian ditempelkan pada media TSA 20% (6 g TSB dan 3 g agar-agar bakto untuk 1000 mL  akuades) sebagai kontrol untuk memastikan tidak ada kontaminan yang terbawa. Jika dalam waktu  48  jam  terdapat  mikroba  yang  tumbuh  maka  akar  tersebut tidak digunakan dalam proses selanjutnya. Setelah diketahui tidak ada  mikroba  yang  tumbuh,  sampel  akar  digerus  dan  ditambah  10 mL  akuades  steril,  kemudian  diencerkan  berseri  sampai  dengan pengenceran 10 -3 dan 10 -4 . Selanjutnya sebanyak 100 µL suspensi ditubuhkan pada medium TSA 20% dan diinkubasi selama 48 jam. Koloni  tunggal  yang  tumbuh  diamati  berdsarkan  bentuk  koloni, bentuk  tepi  bakteri  (Munif et  al. 2015).  Selanjutnya  bakteri disimpan dalam biakan murni untuk dilakukan uji lanjut.

## Uji Hipersensitif
Pengujian ini dilakukan untuk menentukan isolat bakteri endofit yang  berpotensi  sebagai  patogen  tanaman.  Pengujian  dilakukan dengan menumbuhkan koloni tunggal bakteri pada 10 mL medium TSB  100%  kemudian  digoyang  selama  48  jam.  Selanjutnya, sebanyak  3  mL  suspensi  bakteri  endofit  diinjeksikan  pada  daun tanaman  tembakau.  Setelah  48  jam  diamati  gejala  yang  muncul. Apabila  terjadi  nekrosis  maka  isolat  bakteri  berpotensi  sebagai patogen  tanaman  dan  tidak  dapat  digunakan  pada  uji  selanjutnya (Klement dan Goodman 2000).

## Uji Haemolisis
Pengujian ini dilakukan untuk menentukan isolat bakteri endofit yang  berpotensi  sebagai  patogen  pada  mamalia.  Pengujian dilakukan  dengan  menumbuhkan  koloni  tunggal  pada  medium agar darah. Apabila setelah 48 jam menunjukkan zona bening dan zona keruh (gelap) maka isolat bakteri endofit menandakan reaksi positif  dalam  mendegradasi  sel  darah  merah  mamalia,  sehingga tidak  dapat  digunakan  pada  uji  selanjutnya  karena  mampu mendegradasi komponen sel darah manusia (Payment et al. 1994).
Uji Kemampuan Bakteri Endofit dalam Menekan
Pertumbuhan F. oxysporum
Pengujian ini bertujuan untuk mendapatkan bakteri endofit yang berpotensi  sebagai  agens  biokontrol F.  oxysforum. Isolat F. oxysporum yang  digunakan  merupakan  isolat  koleksi  dari Laboratorium Mikologi Tumbuhan, Departemen Proteksi
Tanaman,  IPB  University.  (Metode  yang  digunakan  yakni dual culture dan  menggunakan  2  jenis  media  yang  berbeda.  Media tumbuh  yang  digunakan  untuk  uji  antagonis  adalah  media  NA 100%  dan  media  TSA.  Patogen F.  oxysporum ditanam  tepat  di tengah  cawan  Petri  (diameter  8  cm).)  Isolat F.  oxysporum ditumbuhkan  ditengah  cawan  petri  dan  diapit  oleh  bakteri  endofit pada  media  PDA  dan  TSA,  sebagai  kontrol F.  oxysporum ditumbuhkan  tanpa  bakteri  endofit.  Pengujian  menggunakan
rancangan  acak  lengkap  dengan  2  kali  ulangan.  Pertumbuhan F. oxysporum pada  perlakuan  dan  pada  kontrol  diukur  jari-jarinya, kemudian  persentase  penghambatan  dihitung  pada  hari  keenam setelah inokulasi dengan menggunakan rumus sebagai berikut.

## 𝑃 = 𝑅1−𝑅2 𝑅1 𝑥100%
Dengan  P,  persentase  penghambatan  pertumbuhan  (%);  R1,  jarak jari-jari miselium pada perlakuan (cm); R2, jari-jari miselium pada kontrol (cm) (Munif et al. 2015).

## Analisis Data
Data  yang  diperoleh  kemudian  diuji  statistik  menggunakan program SAS 9.1 dan apabila terdapat pengaruh nyata dilanjutkan dengan uji Tukey pada taraf 5%.

## 3. Hasil dan Pembahasan

## Bakteri Endofit dari Akar Okra
Total  bakteri  endofit  yang  diperoleh  dari  perakaran  okra sebanyak  9  morfospesies  (Tabel  1).  Berdasarkan  karakter morfologi,  bakteri  yang  diperoleh  umumnya  berbentuk  bulat  (8 isolat)  dan  tidak  beraturan  (1  isolat).  Sementara  itu,  bentuk  sudut dan  tepi  koloni  bakteri  beragam  satu  dengan  yang  lainnya. Masing-masing  isolat  kemudian  diuji  potensinya  sebagai  agens hayati untuk pengendalian penyakit tanaman.
Tabel 1. Morfologi bakteri endofit asal akar okra
Kode Isolat Bentuk Sudut Tepi AOB1 Irregular Umbonate Undulate AOB2 Circular Flat Entire AOB3 Circular Umbonate Lobate AOB4 Circular Flat Undulate AOB5 Circular Flat Lobate AOB6 Circular Umbonate Entire AOB7 Circular Crateriform Undulate AOB8 Circular Flat Undulate AOB9 Circular Flat Entire
Jumlah  morfospesies  yang  didapatkan  menunjukkan  bahwa hanya 9 morfospesies bakteri endofit saja yang berasosiasi dengan Okra.  Hal  ini  disebabkan  karena  isolasi  hanya  dilakukan  pada perakaran dari 1 tanaman saja, tidak dari banyak tanaman. Ray et al .  (2015)  telah  memperoleh  150  strain  bakteri  endofit  dari tanaman  okra  sehat  yang  diisolasi  selama  periode  6  bulan, sehingga  populasi  bakteri  endofit  pada  tanaman  okra  masih berpeluang  untuk  dieksplorasi  baik  jenis  bakterinya  maupun fungsionalnya sebagai agens hayati maupun pemacu pertumbuhan tanaman.
Hasil  pengujian  keamanan  hayati  berupa  uji  haemolisis menunjukkan  bahwa  isolat  bakteri  endofit  yang  diperoleh  tidak menunjukkan  adanya  potensi  sebagai  patogen  pada  mamalia dengan  tidak  terbentuknya  zona  bening  pada  medium  agar  darah pada  pengamatan  24  dan  48  jam  setelah  inokulasi  (Gambar  1). Akan tetapi, pada uji hipersensitif sebanyak 6 isolat menunjukkan
potensi  sebagai  patogen  pada  tanaman  yang  ditunjukkan  dengan munculnya  gejala  nekrotik  pada  daun  tembakau  yang  telah diinokulasi  bakteri  endofit  (Gambar  2).  Reaksi  hipersensitif muncul sebagai  pertahanan  tanaman  untuk  menghambat pertumbuhan  patogen.  Berdasarkan  kedua  pengujian  tersebut, isolat yang aman secara hayati yaitu yang bereaksi negatif pada uji hipersensitif  dan  haemolisis.  Adapun  isolat  yang  bereksi  negatif terhadap  kedua  pengujian  yaitu  isolat  AOB1,  AOB3,  dan  AOB4 (Tabel 2), yang terpilih untuk diuji pada tahap selanjutnya.
A B
Gambar 1. Uji hemolisis bakteri endofit  pada medium agar darah A)  24 jam setelah inokulasi, B) 48 jam setelah inokulasi
Gambar 2. Uji hipersensitif pada daun tembakau isolat: a.  AOB1, b.
AOB3, dan c.  AOB4
Tabel 2. Pengujian keamanan hayati bakteri endofit asal akar okra
Kode Isolat Pengujian Hipersensitif Pengujian Haemolisis AOB1 -* - AOB2 + - AOB3 - - AOB4 - - AOB5 + - AOB6 + - AOB7 + - AOB8 + - AOB9 + -
*  +  :  menunjukkan  reaksi  hipersensitif  /  haemolisis,  -  :  tidak  menunjukkan reaksi hipersensitif / haemolisis

## Kemampuan  Bakteri  Endofit  Menghambat  Pertumbuhan

## Fusarium oxysporum
Berdasarkan  uji  statistik,  pada  media  PDA  bakteri  endofit menunjukkan  adanya  pengaruh  nyata  terhadap  penghambatan pertumbuhan F. oxysporum yang ditunjukkan dengan adanya zona
bening  pada  pertemuan  bakteri  endofit  dan  patogen,  sedangkan pada  media  TSA  tidak  menunjukkan  adanya  perbedaan  nyata (Gambar  3).  Hal  ini  disebabkan  karena  PDA  merupakan  medium yang  tidak  sesuai  bagi  pertumbuhan  bakteri,  sehingga  dengan kondisi  tercekam  bakteri  endofit  akan  memproduksi  metabolit sekunder untuk keberlangsungan hidupnya.
Tanaman  okra  telah  dilaporkan  Tandi et  al .  (2020)  mampu memproduksi  flavonoid  dan  alkaloid  sebagai  metabolit  sekunder. Flavanoid  dan  alkaloid  telah  diketahui  sebagai  senyawa antimikroba  dengan  mengganggu  permeabilitas  membran  sel  dan respirasi  sel,  serta  berperan  dalam  interkalasi  DNA  (Dewi et  al . 2016;  Yanti et  al .  2016).  Berbeda  dengan  bakteri  endofit  pada TSA  yang merupakan medium  yang menyediakan nutrisi lengkap untuk  bakteri.  Bakteri  endofit  tidak  perlu  mempertahankan hidupnya  dengan  memproduksi  metabolit  sekunder,  sebab  suplai nutrisi sudah terjamin.
Pada  medium  PDA,  semua  isolat  bakteri  endofit  menunjukkan adanya  penghambatan  pertumbuhan F.  oxysforum .  Akan  tetapi, hanya  ada  1  isolat  yang  membentuk  zona  hambat,  yaitu  isolat AOB3.  Hal  ini  menunjukkan  bahwa  isolat  AOB3  mempunyai mekanisme  antibiosis  dalam  menekan  pertumbuhan  patogen dengan  efikasi  penghambatan  sebesar  19.35%,  diikuti  oleh  silat AOB4  dan  AOB1,  berturut-turut  sebsar  16.13%  dan  14.51% (Tabel 3).
Gambar 3. Uji antagonis bakteri endofit asal akar okra terhadap pertumbuhan F.oxysporum pada media 1). PDA, 2) TSA, A).kontrol, B) AOB1, C) AOB3, dan D) AOB4
Tabel  3.  Daya  hambat  bakteri  endofit  terhadap  pertumbuhan
Fusarium oxysporum Kode Isolat Medium PDA Medium TSA Panjang jari-jari (cm) Efikasi (%) Zona bening Panjang jari-jari (cm) Efikasi (%) Zona bening Kontrol 3.10a* 0 - 2.30a 0 - AOB1 2.65  b 14.51 - 2.70a -17.39 - AOB3 2.50  c 19.35 + 2.70a -17.39 - AOB4 2.60bc 16.13 - 2.65a -17.39 -
*Angka-angka pada kolom yang sama yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (uji Tukey)
Pada  penelitian  ini  zona  hambat  yang  terbentuk  masih  sedikit, sebab  besarnya  zona  hambat  tergantung  dari  jenis  dan  stabilitas metabolit  yang  dihasilkan  oleh  masing-masing  bakteri  yang berfungsi sebagai antifungi terhadap cendawan patogen. Selain itu, kemampuan penghambatan secara in vitro juga dapat dipengaruhi oleh  jenis,  kelarutan  dan  kestabilan  senyawa  antimikroba  yang
dihasilkan  oleh  bakteri  pada  media  uji,  dan  kepadatan  serta  jenis media uji (Arios et al .  2014).

## 4. Kesimpulan
Seleksi  9  isolat  bakteri  endofit  dari  perakaran  tanaman  okra diperoleh 3 isolat yang lolos uji keamanan hayati (tidak berbahaya bagi  mamalia  dan  tanaman).  Sementara  itu  isolat  yang menunjukkan  potensi  sebagai  agens  biokontrol F.  oxysporum adalah isolat AOB3 dengan ditunjukkan terbentuknya zona hambat dan  kemampuan  menekan  pertumbuhan F.  oxysporum sebesar 19.35%.

## 5. Referensi
Adekiya,  A.O.,  T.M.  Agbede,  C.M.    Aboyeji,  O.  Dunsin,  and Ugbe  JO.  2019.  Green  manures  and  NPK  fertilizer  effect  o soil  properties,  growth,  yield,  mineral,  and  vitamin  C composition of Okra ( Abelmoschus esculantus (L.) Moench).
Journal  of  the  Saudi  Society  of  Agricultural  Sciences
18(2):218-223.
Afzal, S., S. Tariq, V. Sultana, J. Ara, S. Ehteshamul-Haque. 2013.
Managing  the  root  disease  of  okra  with  endo-root  plant growth  promoting Pseudomonas and Trichoderma  viridae associated with healthy okra roots. Pak. J. Bot. 45(4): 1455-
1460.
Altomare, C., W.A. Norvell, T. Bjorkman and G.E. Harman. 1999.
Solibilization  of  phosphates  and  micronutrients  by  the  plant growth  promoting  and  biocontrol  fungus Trichoderma harzianum Rafai  1295-22. Appl.  Environ. Microbiol., 65:
2926-2933.
Arifah,  S.H.,  M.  Astiningtrum,  dan  Y.E.  Susilowati.  2019.
Efektivitas  macam  pupuk  kandang  dan  jarak  tanam  pada hasil  tanaman  okra  ( Abelmoschus  esculantus L.  Moench).
Vigor:  Jurnal  Ilmu  Pertanian  Tropika  dan  Subtropika
4(1):38-42.
Arios,  N.L.,  D.  Suryanto,  K.  Nurtjahja,  E.  Munir.  2014.  Asai kemampuan  bakteri  endofit  dari  kacang  tanah  dalam menghambat  pertumbuhan Sclerotium sp.  pada  kecambah kacang tanah. Jurnal HPT Tropika. 14(2):178-186.
Athar,  M.,  dan  T.Z.  Bokhari.  2006.  Ethnobotany  and  production constraints  of  traditional  and  commonly  used  vegetables  of
Pakistan. J. Vege. Sci., 12: 27-38.
Christy,  M.D.W.S.,  K.  Yurlisa,  dan  K.P.  Wicaksono.  2020.
Pengaruh  konsentrasi plant  growth  promoting  rhizobacteria (PGPR)  dan  pupuk  kandang  ayam  pada  pertumbuhan  dan hasil  tanaman  okra  merah  ( Abelmoschus  esculantus (L.)
Moench)  di  musim  hujan. Jurnal  Produksi  Tanaman 8(1):
49-57.
Dewi, S., S.N.Y.R.S. Asseggaf, D. Natalia, dan Mahyarudin. 2016.
Efek ekstrak etanol daun kesum ( Polygonum minus Huds.) sebagai  Antifungi  terhadap Trichophyton  rubrum . Jurnal kesehatan Andalas 8 (2): 198-203.
Ehteshamul-Haque,  S.,  M.  Abid,  V.  Sultana,  J.  Ara  and  A. Ghaffar. 1996. Use of organic amendments on the efficacy of  biocontrol  agents  in  the  control  of  root  rot  and  root knotdisease complex of okra. Nematol. Medit. , 24: 13-16.
Hallmann,  J.,  A.  Quadt-Hallman,  R.  Rodriuez-Kabana  and  J.W.
Kloepper.  1998.  Interactions  between Meloidogyne
incognita and endophytic bacteria in cotton and cucumber.
Soil Biol. Biochem., 30: 925-937.
Klement  Z,  Goodman  R.  1967.  The  hypersensitive  reaction  to infection  by  bacterial  plant  pathogens. Ann  Rev Phytopathol . 5 (1): 17-44.
Kobayashi,  J.W.  and  J.D.  Palumbo.  2000.  Bacterial  endophytes and their effects on plants and uses in agriculture. pp. 199- 233.  In: Microbial  Endophytes .  (Eds.):  C.W.  Baccon  and J.F. White. Marcel Dekker, Inc, New York.
Leong, J. 1986. Siderophores: their biochemistry and possible role in the biocontrol of plant pathogens. Ann . Rev . Phytopath .,
24: 187-209.
Mardhiana  M,  Pradana  AP,  Adiwena  M,  Santoso  D,  Wijaya  R,
Murtilaksono  A.  2017.  Use  of  endophytic  bacteria  from
roots  of  Cyperus  rotundus  for  biocontrol  of  Meloidogyne incognita. Biodiversitas. 18 (4): 1308-1315.
Munif  A,  Pradana  AP,  Soekarno  BPW,  Herliyana  NN.  2015.
Isolasi  dan  uji  potensi  konsorsium  bakteri  endofit  asal tanaman  kehutanan  sebagai  agen  biokontrol  dan  pemacu pertumbuhan tanaman tomat. Prosiding Seminar
Perlindungan  Tanaman  II.  Bogor  Agricultural  University,
Bogor, 13 November 2014
Payment  P,  Coffin  E,  Paquette  G.  1994.  Blood  agar  to  detect
virulence  factors  in  tap  water  heterotrophic  bacteria. Appl
Environ Microbiol . 60 (4): 1179-1183.
Ray, S., S. Singh, B.K. Sarma, and H.B. Singh. 2015. Endophytic Alcaligenes Isolated from Horticultural and Medicinal Crops Promotes Grwoth in Okra ( Abelmoschus esculentus ). J. Plant
Growth Regul : 1-12.
Rustiawan.  E.,  H.  Jannah,  dan  H.J.  Mirawati.  2017.  Pengaruh media tanam terhadap pertumuhan benih okra ( Abelmoschus esculantus )  lokal  Sumbawa  sebagai  dasar  penyusunan  buku petunjuk  praktikum  fisiologi  tumbuhan. Bioscientist:  Jurnal
Ilmiah Biologi 5(1):27-33.
Sanwal, S.K., K. Lakminarayana, R.K. Yadav, N. Rai, D.S. Yadav,
and  B.  Mousumi.  2007.  Effect  of  organic  manures  on  soil fertility,  growth,  physiology,  yield  and  quality  of  turmeric.
Indian J. Hort. 64(4): 444-449.
Siddiqui, I.A. and S. Ehteshamul-Haque. 2001. Suppression of the root  rot-root  knot  disease  complex  by Pseudomonas aeruginosa in  tomato:  The  influence  of  inoculum  density, nematode  population,  moisture  and  other  plant  associated bacteria. Plant & Soil, 237: 81-89.
Sultana,  V.,  S.  Ehteshamul-Haque,  J.  Ara  and  M.  Athar.  2005.
Comparative  efficacy  of  brown,  green  and  red  seaweeds  in the  control  of  root  infecting  fungi  of  okra. Int.  J.  Environ.
Sci. Tech. , 2: 129-132.
Tandi,  J.,  B.  Melinda,  A.  Purwantari,  dan  A.  Widodo.  2020.
Analisis  kualitatif  dan  kuantitatif  metabolit  sekunder ekstrak  etanol  buah  okra  ( Abelmoschus  esculentus L.
Moench)  dengan  metode  spektrofotometri  UV-Vis.
KOVALEN: Jurnal Riset Kimia . 6 (1): 74-80.
Tariq,  S.,  R.  Khan,  V.  Sultana,  J.  Ara  and  S.  Ehteshamul-Haque.
2009. Utilization of endo-root fluorescent Pseudomonas of chili  for  the  management  of  root  diseases  of  chili. Pak.  J.
Bot., 41: 3191-3198.
Weller,  D.M.,  J.M.  Raaijimakers,  B.B.M.  Gardener  and  L.S. Thomashow.  2002.  Microbial  population  responsible  for specific soil suppressiveness to plant pathogens. Annu. Rev.
Phytopathol., 40: 309-348.
Yanti,  N.,  Samingan,  dan  Mudatsir.  2016.  Uji  aktivitas  antifungi ekstrak etanol gal manjakani ( Quercus infectoria ) terhadap
Candida  albicans . Jurnal  Ilmiah  Mahasiswa  Pendidikan
Biologi . 1(1):1-9.