## PENGARUH PERLAKUAN PEMATAHAN DORMANSI TERHADAP KEMAMPUAN PERKECAMBAHAN BENIH AREN (Arenga pinnata Merr.)
The Effect of Dormancy Breaking Treatment on Germination Ability of Sugar Palm Seeds (Arenga pinnata Merr.)
Atia Aryuni Putri 1 , Budiman 2 , Ummu Kalsum 2* , Moh Ega Elman Miska 2 1 Mahasiswa Program studi Agroteknologi, Fakultas Teknologi Industri, Universitas Gunadarma (Gunadarma University). atiaputri21.ap@gmail.com
2 Staff Pengajar Program Studi Agroteknologi Fakultas Teknologi Industri, Universitas Gudarma
(Gunadarma University).
budiman@staff.gunadarma.ac.id;
ummukalsum89@gmail.com; moh.egaelmanmiska@gmail.com.
*) Penulis korespondensi

## ABSTRAK
Tanaman aren ( Arenga pinnata Merr.) merupakan tanaman yang memiliki potensi untuk  dikembangkan  pada  masa  yang  akan  datang  dan  memiliki  nilai  ekonomi  yang tinggi. Akan tetapi populasi tanaman aren semakin berkurang dan semakin langka karena hanya dapat diperbanyak secara generatif (biji) dan membutuhkan waktu yang lama untuk perkecambahan.  Oleh  karena  itu,  penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh perlakuan pematahan dormansi terhadap kemampuan perkecambahan biji aren. Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktor tunggal dengan 5 ulangan yang terdiri dari 5 perlakuan yaitu tanpa perlakuan (kontrol) (K 0 ), Skarifikasi Mekanis (K 1 ), skarifikasi mekanis + NaOCl 1% selama 10 menit (K 2 ), skarifikasi mekanis +  GA 3 100 ppm selama 20 menit (K 3 ) dan skarifikasi mekanis +  Asam Sulfat 85% selama 50 menit (K 4 ).  Terdapat  25  unit  percobaan  dengan  setiap  unit  percobaan  terdiri  dari  5  biji  aren sehingga  diperoleh  125  biji  aren.  Data  yang  didapatkan  dianalisis  dengan Analysis  of variance (ANOVA)  dengan  taraf  5%  dan  apabila  ada  perbedaan  dilakukan  uji  lanjut dengan Duncan  Multiple  Range  Test (DMRT)  dengan  taraf  5%.  Hasil  penelitian menunjukkan  bahwa  perlakuan  skarifikasi  mekanis  +  NaOCl  1%  selama  10  menit berpengaruh  mempercepat  prosess  perkecambahan  biji  aren  dapat  dilihat  pada  semua parameter, yaitu laju perkecambahan, uji perkecambahan, indeks vigor, potensi tumbuh maksimum, Panjang plumula kecambah dan panjang akar.
Kata kunci : asam giberelat, asam sulfat, natrium hipoklorit

## ABSTRACT
Sugar Palm (Arenga pinnata Merr.) are plants that can be developed in the future and have high economic value. The palm plant population is reduced and increasingly rare  because  it  can  only  be  used  generatively  (seeds)  and  takes  a  long  time  for germination. This study aims to determine the effect of dormancy prevention treatment on the ability of palm seeds. This research uses a completely randomized design (CRD) factor  with  five  replications  consisting  of  5  treatments,  namely  no  treatment  (control) (K0),  Mechanical  Scarification  (K1),  mechanical  scarification  +  1%  NaOCl  for  10 minutes  (K2),  mechanical  scarification  +  GA3  100  ppm  for  20  minutes  (K3)  and mechanical  scarification  +  Sulfuric  Acid  85%  for  50  minutes  (K4).  There  are  25
experimental  units,  each  consisting  of  5  palm  seeds  so  that  125  sugar  palm seeds  are obtained. The data obtained were analyzed by the Analysis of Variance (ANOVA) with a level of 5% and if there was a difference in advanced test with Duncan Multiple Range Test  (DMRT)  with  a  5%  level.  The  results  showed  that  the  treatment  of  mechanical scarification + NaOCl 1% for 10 minutes influence to accelerate the process of palm seed germination  can  be  seen  in  the  pace  parameters  of  germination,  the  vigor  index, germination test, the maximum growing potential, plumula length of the sprouts and root length Match the conclusion to the objective of this study.

## Keywords: gibberellic acid, natrium hypochlorite, sulfuric acid

## PENDAHULUAN
Tanaman  aren  ( Arenga  pinnata Merr.)  merupakan  tanaman  perkebunan asli  Asia  Tenggara  dan  dapat  ditemukan di  hutan  hujan  tropis  atau  hutan  kering dan  tersebar  hampir  di  seluruh  wilayah Indonesia. Tanaman aren memiliki potensi  untuk  dikembangkan  pada  masa yang  akan  datang  dan  memiliki  nilai ekonomi  yang  tinggi  sehingga  dapat diusahakan  secara  komersial  (Farida, 2017). Berdasarkan data Disbun Sumatera  Barat  (2015),  total  luas  areal tanaman  aren  di  Sumatera  Barat  pada tahun  2014  adalah  1.620  ha  yang keseluruhannya  merupakan  perkebunan rakyat.  Namun,  tanaman  ini  kurang mendapat perhatian untuk dikembangkan atau  dibudidayakan  secara  sungguh- sungguh oleh berbagai pihak.
Pemanfaatan dan pemahaman masyarakat  tentang  produksi  tanaman aren masih sangat terbatas. Tanaman aren belum  dibudidayakan  dan  usaha  dalam penerapan teknologi yang minim
(tradisional).  Populasi  tanaman  aren semakin  berkurang  dan  semakin  langka dan  disebabkan  juga  perambahan  hutan dan  penebangan  pohon  aren  yang  tidak diimbangi  dengan  regenerasi  tanaman aren muda.
Perbanyakan  tanaman  aren  hanya dapat dilakukan secara generatif yaitu dari biji aren namun perkecambahan menggunakan  biji  memerlukan  waktu yang relatif lama
untuk perkecambahannya karena memiliki struktur  kulit  yang  tebal  dan  keras. Menurut Marsiwi (2012) secara alami biji aren memiliki masa dormansi yang cukup lama,  yaitu  bervariasi  dari  1-12  bulan disebabkan oleh kulit biji yang keras dan bersifat impermeabel sehingga menghambat  terjadinya  proses  imbibisi air  ke  dalam  benih.  Oleh  karena  itu, diperlukan  upaya  mempercepat  proses perkecambahan  dengan  cara  melakukan pematahan dormansi terhadap benih aren. Pematahan  dormasi  dapat  mempercepat proses  perkecambahan  dalam  jumlah
banyak  dan  dalam  waktu  yang  relatif singkat.
Benih  dikatakan  dorman  apabila benih  tersebut  sebenarnya  hidup  tetapi tidak  berkecambah  meskipun  dalam keadaan  yang  secara  umum  dianggap telah  memenuhi  persyaratan  bagi  suatu perkecambahan (Sutopo, 2012). Dormasi merupakan  keadaan  dimana  benih  sehat tidak  dapat  melakukan  perkecambahan yang disebabkan oleh absennya salah satu persyaratan  dari  luar  biji  untuk  proses perkecambahan dan penyebab dari dalam biji  itu  sendiri  misalnya  karena  embrio belum  terbentuk  sempurna  sehingga benih  memerlukan  masa  istirahat  ( after ripening ) (Yudono, 2012).
Teknik  pematahan  dormasi  dapat dilakukan dengan beberapa metode seperti perendaman  dalam  air,  pengurangan ketebalan kulit (amplas, kikir, dan gores), perendaman dengan zat kimia, penyimpanan benih dalam kondisi lembab dengan  suhu  dingin  dan  hangat  atau disebut skarifikasi (Widajati et al., 2013).
Pemilihan  metode  perlakuan  pematahan dormansi  pada  suatu  benih  ditentukan sesuai  dengan  jenis  dormansi  pada  benih tersebut.  Benih  dorman  akan  lebih  cepat berkecambah dan menghasilkan pertumbuhan yang seragam jika diterapkan perlakuan pematahan dormansi
yang tepat. Pematahan dormansi menggunakan  air  panas  atau  perlakuan kimia  yang  berguna  untuk  meningkatkan permeabilitasnya  terhadap  air  merupakan pemecahan dormansi paling baik. Persentase  perkecambahan  aren  sebesar 78,33%  dan  indeks  vigor  sebesar  0,161 (Farida,  2017).  Menurut  Tanjung et  al (2017),  persentase  perkecambahan  aren sebesar 100% dengan perlakuan konsentrasi  75%  asam  sulfat  direndam selama 10 menit.
Berdasarkan  uraian  diatas  perlu dilakukan penelitian dengan mem- bandingkan  berbagai  macam  perlakuan dengan tujuan untuk mengetahui pengaruh perlakuan  pematahan  dormansi  terhadap perkecambahan dan per-tumbuhan kecambah benih aren.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian ini dilaksanakan di Nursery , kampus F7 Universitas Gunadarma, Ciracas Jakarta Timur. Penelitian  ini  dilakukan  dari  bulan Februari  sampai  Juni  2021.    Benih  aren yang  digunakan  sebagai  sampel  berasal dari  Provinsi  Bengkulu  bervarietas  Aren Smulen ST.1.yang berasal dari Kecamatan Binduriang,  Kabupaten  Rejang  Lebong, Provinsi  Bengkulu.  Lokasi  penelitian diberi  naungan  menggunakan  paranet
setinggi 1 m dengan ukuran 55%. Naungan berfungsi  untuk  mencegah  bibit  aren terkena  sinar  matahari  secara  langsung karena  bibit  aren  sangat  peka  terhadap sinar matahari langsung. Apabila perkecambahan aren tidak diberi naungan, maka  resiko  dan  tingkat  kematian  sangat tinggi  (Sitohang,  2019).  Bahan  yang digunakan  adalah  asam  sulfat,  NaOCl, asam giberelin, aquades dan media tanam berupa pasir dan pupuk kandang (Effendi, 2010).  Alat  yang  digunakan  dalam penelitian ini antara lain adalah: sekop, bak perkecambahan, timbangan digital, cawan, oven, penggaris, alat tulis, gelas ukur dan spatula
Perlakuan perendaman dengan larutan  asam  sulfat,  NaOCl,  dan  asam giberelin  dilakukan  dengan  cara  benih yang  sudah  diamplas  dimasukkan  dalam wadah yang berisi larutan sesuai perlakuan seperti  pada  larutan  NaOCl  1  %,  larutan asam giberelin 100 ppm dan larutan H 2 SO 4
75%. Media tanam menggunakan campuran  pasir  dan  pupuk  kendang  yang telah  disterilkan  dengan  perbandingan  1  : 1. Disemai dalam polybag berukuran 15 x 15  cm.  agar  media  tanam  dalam  keadaan lembab diberi naungan paranet berukuran 55 %. Prosedur penelitian yang dilakukan antara  lain  yaitu  sterilisasi  media  tanam, persiapan  media  tanam,  persemaian  dan
pengamatan sampai dengan 120 HSS (Hari Setelah Semai).
Penelitian ini menggunakan percobaan faktor tunggal dengan Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL),  yang terdiri atas satu faktor yaitu perlakuan fisik Pada penelitian ini diperlakuan dan setiap perlakuan  diulang  5  kali  sehingga diperoleh  25  unit  percobaan.  Perlakuan yang  diberikan  yaitu  perendaman  dengan lima taraf : K 0 = kontrol, K 1 = Skarifikasi Mekanis,  K 2 =  Skarifikasi  Mekanis  + NaOCl  1%  selama  10  menit,  K 3 = Skarifikasi  Mekanis  +  GA 3 100  ppm selama 20 menit, K 4 = Skarifikasi Mekanis + H 2 SO 4 75% selama 10 menit.
Variabel yang diukur dalam penelitian  ini  adalah  laju  perkecambahan (hari), indeks vigor (benih berkecambah/hari),  uji  daya  kecambah, persentase kecambah
normal (%),persentase  kecambah  abnormal  (%), potensi  tumbuh  maksimum  (%),  panjang plumula kecambah (cm), dan panjang akar (cm).    Data  yang  didapatkan  dianalisis dengan Analysis  of  variance (ANOVA) dengan taraf 5% dan apabila ada pengaruh antar perlakuan maka dilakukan uji lanjut dengan Duncan  Multiple  Range  Test (DMRT)  dengan  taraf  5%  menggunakan SAS 9.0.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Perkecambahan Benih
Perkecambahan  benih  aren  diawali dengan  proses  imbibisi  air  yang  diikuti oleh  pertumbuhan  apokol  pada  bagian benih  yang  telah  di  skarifikasi  mekanis. Posisi  embrio  pada  benih  aren  terletak pada  bagian  kiri  atau  kanan  punggung benih  dengan  ciri-ciri  adanya  lekukan berbentuk  bulat  pada  bagian  punggung benih (Gambar 1a).
Proses  perkecambahan  benih  aren diawali  dengan  munculnya  jaringan berwarna putih seperti cincin pada bagian yang  di  skarifikasi  mekanik  setelah  7-14 hari  setelah  semai  (HSS)  (Gambar  1b). Jaringan seperti cincin ini akan berkembang  dan  membentuk  tabung
memanjang  berwarna  putih  (apokol) (Gambar  1c).  Apokol  akan  memecah  dan membentuk  akar  dan  batang  hingga  daun (Gambar 1d). Perkecambahan aren termasuk  ke  dalam  tipe  epigeal  karena benih  aren  terangkat  ke  permukaan  tanah (Matana, 2013).

## Laju Perkecambahan
Perlakuan  skarifikasi  mekanis  (K 1 ) tidak  berbeda  nyata  dengan  perlakuan Skarifikasi  Mekanis  +  NaOCl  1%  selama 10  menit  (K 2 )  dan  Skarifikasi  Mekanis  + GA 3 100ppm selama 20 menit (K 3 ), tetapi berbeda  nyata  dengan  perlakuan  kontrol (K 0 ) dan perlakuan Skarifikasi Mekanis + H 2 SO 4 75% selama 10 menit (K 4 ) terhadap laju perkecambahan. (Tabel 1).
Gambar 1. Ciri-ciri morfologi benih aren sebelum dan sesudah perkecambahan. (a) Posisi embrio pada benih aren berada pada sisi kiri atau kanan punggung benih, (b) Jaringan yang menyerupai cincin yang tumbuh pada bagian yang diskarifikasi, (c)  Apokol  yang  merupakan  jaringan  memanjang  seperti  tabung,  (d) Perkecambahan benih aren yang sudah bisa menjadi bibit.
Tabel 1. Laju Perkecambahan Biji Aren
Perkecambahan aren pada perlakuan Skarifikasi  Mekanis  (K 1 )  dan  Skarifikasi Mekanis + GA 3 100ppm selama 20 menit (K 3 )  menunjukkan  laju  perkecambahan yang  tercepat  yaitu  14  hari  dan  16  hari, sedangkan  perlakuan  Skarifikasi  Mekanis +  NaOCl  1%  selama  10  menit  (K 2 ) menunjukkan  waktu  laju  perkecambahan paling  lama  yaitu    18  hari  dan  perlakuan kontrol  (K 1 )  dan  Skarifikasi  Mekanis  + H 2 SO 4 75%  selama  10  menit  (K 4 ) menunjukkan  benih  tidak  berkecambah. Waktu yang dibutuhkan untuk kemunculan  radikula  dan  plumula  pada benih  aren  dipengaruhi  oleh  kemampuan benih  menyerap  air,  kemampuan  embrio untuk  keluar  dan  berkecambah  serta perendaman yang tepat pada larutan kimia. Benih  aren  memiliki  salah  satu  karakter untuk melestarikan jenis dan keturunannya yaitu memiliki kulit terluar atau cangkang yang  keras  dan  tebal  sehingga,  proses imbibisi air untuk perkecambahan
terhambat  yang  menyebabkan  terjadinya dormansi testa benih (Silalahi, 2017).
Perlakuan  fisik  dan  kimia  dapat membantu  air  masuk  kedalam  biji  dan embrio dapat keluar dan berkecambah. Hal ini  sesuai  pendapat  Hedty et  al (2014), yang menyatakan secara kimia pemecahan dormansi  dapat  dilakukan  dengan  cara merendamkan  benih  pada  larutan  asam dengan  waktu  perendaman  yang  berbeda tergantung pada bentuk benih. Perkecambahan  yang  dipengaruhi  oleh larutan  kimia  mampu  memecahkan  kulit biji yang dapat menyerap air dan terjadinya imbibisi pada benih (Ali et al, 2011).

## Uji Daya Kecambah

## Persentase Kecambah Normal
Perkecambahan aren selama penelitian  120  HSS  memperlihatkan kondisi  yang  kurang  bagus  dengan persentase 48% pada perlakuan Skarifikasi Mekanis  +  NaOCl  1%  selama  10  menit (K 2 )  (Gambar  2).  Hal  ini  disebabkan
Perlakuan Laju perkecambahan (hari) Kontrol ( K 0 ) 0 b Skarifikasi Mekanis (K 1 ) 14 a Skarifikasi Mekanis + NaOCl 1% selama 10 menit (K 2 ) 18 a Skarifikasi Mekanis + GA 3 100ppm selama 20 menit (K 3 ) 16 a Skarifikasi Mekanis + H 2 SO 4 75% selama 10 menit (K 4 ) 0 b
Keterangan:  Angka-angka  diikuti  oleh  huruf  yang  sama  pada  kolom  dan  perlakuan  yang  sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf α = 5%.
skarifikasi  dan  perendaman  benih  dalam larutan kimia menyebabkan mudah masuknya  air  dan  gas  kedalam  biji sehingga  memberikan  perkecambahan yang baik. Sesuai dengan pernyataan Oben et  al (2014),  yang  menyatakan  bahwa perlakuan  terhadap  benih  memberikan kecepatan  tumbuh  yang  baik,  karena  air dan  oksigen  yang  dibutuhkan  untuk perkecambahan  dapat  masuk  kedalam benih tanpa halangan sehingga benih dapat berkecambah.    Tingginya  persentase kecambah normal pada perlakuan skarifikasi mekanis + NaOCl 1% disebabkan oleh perendaman pada larutan NaOCl. Hal ini disebabkan larutan NaOCl merupakan  senyawa  kimia  golongan desinfectan  yang  mengandung  klorida sehingga dapat meningkatkan permeabilitas  kulit  benih  dan  ketahanan terhadap  serangan  hama  dan  penyakit. Meningkatnya  permaebilitas  benih  akan mempercepat proses perkecambahan (Ardiansyah, et  al .,  2014). Selain  itu menurut  Nugroho et  al (2015),  bahwa
persentase  perkecambahan  yang  tinggi terjadi metabolisme sel-sel embrio setelah menyerap air yang didalamnya berlangsung reaksi perombakan yang biasa disebut katabolisme dan sintesa komponen-komponen sel untuk pertumbuhan  atau  yang  dikenal  dengan anabolisme.  Proses  metabolisme  ini berlangsung terus dan merupakan pendukung  dari  pertumbuhan  kecambah hingga dewasa.

## Persentase Kecambah Abnormal
Persentase kecambah abnormal benih  aren  tertinggi  pada  perlakuan Skarifikasi  Mekanis  +  NaOCl  1%  selama 10  menit  (K 2 )  yaitu  24%  yang  berbeda nyata dengan perlakuan perlakuan lainnya (Gambar  2).  Hal  ini  dapat  disebabkan pengaruh  dari  penggunaan  media  tanam berupa  pasir  dan  pupuk  kandang.  Media tanam yang terlalu padat dan lembab pada saat  perkecambahan  dapat  menyebabkan radikula bengkok dan akar primernya tidak tubuh.
Gambar 2. Persentase Kecambah Normal dan Abnormal. Angka pada Kolom yangSama Diikuti oleh Huruf yang Sama Tidak Berbeda Nyata pada Uji Lanjut DMRT.
Benih  yang  koleoptil  dan  akar primernya  tidak  muncul  disebabkan  oleh metabolisme  benih  yang  berjalan  sangat lambat,  hal  tersebut  disebabkan  oleh aktivitas  enzimatis  benih  yang  terhambat akibat  pengaruh  konsentrasi  bahan  kimia yang  tinggi  sehingga  banyak  sisa  bahan kimia  yang  menempel  pada  kulit  biji. Pematahan dormansi dengan cara perendaman  bahan  kimia  harus  dibilas dengan air sampai zat tersebut benar-benar hilang sehingga tidak menghambat proses perkecambahan (Widyawati, 2011).
Kecambah abnormal ditandai dengan  akar  primer  yang  pendek,  bentuk kecambah  cacat,  perkembangan  bagian- bagian  penting  seperti  radikula  dan koleoptil  lemah,  radikula  dan  koleoptil membengkok  atau  terputar,  kecambah kerdil,  kecambah  rusak,  perkembangan kecambah  yang  lemah,  dan  kecambah lunak (Pratiwi, 2016).

## Indeks Vigor
Hasil analisis sidik ragam menunjukkan  indeks  vigor  benih  aren terbaik pada perlakuan Skarifikasi Mekanis + GA 3 100ppm selama 20 menit (K 3 )  yaitu  25.98  benih  berkecambah/hari yang tidak berbeda nyata dengan perlakuan  Skarifikasi  Mekanis  +  NaOCl 1% selama 10 menit (K 2 ) yaitu 24.36 benih berkecambah/hari.  Indeks  vigor  sendiri berhubungan  erat  dengan  kecepatan tumbuh  benih  (hari  berkecambah)  yang mana  kecepatan  tumbuh  akan  berbanding lurus  dengan  indeks  vigor  benih.  Hal  ini sesuai dengan Adrian (2011) menyebutkan semakin  cepat  pertumbuhan  kecambah maka  semakin  tinggi  vigor  kecambah. Tinggi  rendahnya  vigor  benih  akan menggambarkan  kekuatan  tumbuh  dan pertumbuhan  kecambah.  Semakin  tinggi vigor  maka  kekuatan  perkecambahan menjadi lebih baik.
Tabel 3. Indeks Vigor Perkecambahan Biji Aren
Perlakuan Indeks Vigor (benih berkecambah/hari) Kontrol (K 0 ) 0.00 c Skarifikasi Mekanis (K 1 ) 6.28 b Skarifikasi Mekanis + NaOCl 1% selama 10 menit(K 2 ) 24.36 a
Skarifikasi Mekanis + GA 3 100ppm selama 20 menit (K 3 ) 25.98 a Skarifikasi Mekanis + H 2 SO 4 75% selama 10 menit (K 4 )
0.00 c
Keterangan : Angka-angka diikuti oleh huruf yang sama pada kolom dan  perlakuan yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf α = 5%.
Perlakuan  Kontrol  (K 0 )  menun- jukkan  hasil  penelitian  terendah  pada semua parameter.
Hal  ini  dikarena  pada  perlakuan kontrol  tidak  dilakukan  upaya  pematahan dormansi  secara  kimia  sehingga  tidak mengalami  kelunakan  pada  bagian  kulit benihnya  sehingga  kulit  benih  aren  tetap kedap air dan oksigen. Kondisi kulit benih yang  kedap  tersebut  dapat  menghambat atau memperlambat proses perkecambahan,  karena  tahap  awal  dan proses  perkecambahan  adalah  peristiwa imbibisi  air  atau  proses  masuknya  air kedalam  biji.  Sebagaimana  menurut Sutopo  (2012),  bahwa  tahapan  pertama suatu  perkecambahan  benih  dimulai dengan proses penyerapan air oleh benih.

## Potensi Tumbuh Maksimum
Potensi  Tumbuh  Maksimum  (PTM) adalah kemampuan benih untuk
berkecambah  walaupun  terdapat  benih yang  tidak  berkecambah  normal.  PTM benih  aren  pada  percobaan  ini  bervariasi (Gambar 3).
Rata-rata  PTM  tertinggi  pada  benih aren  terdapat  pada  perlakuan  Skarifikasi Mekanis  +  NaOCl  1%  selama  10  menit (K 2 )  yaitu  72%  yang  tidak  berbeda  nyata dengan  perlakuan  Skarifikasi  Mekanis  + GA 3 100ppm  selama  20  menit  (K 3 ).    Hal tersebut karena GA 3 merupakan salah satu zat  pengatur  tumbuh  sintetik  yang berperan  dalam  meningkatkan  potensi tumbuh maksimum. Sesuai dengan pendapat Tikafebiati et  al .  (2019) menyatakan bahwa giberelin dapat meningkatkan potensi tumbuh dari embrio dan  dapat  mengatasi  hambatan  mekanik dalam  perkecambahan  yang  diakibatkan oleh lapisan penutup benih.
Gambar 3. Potensi Tumbuh Maksimum Perkecambahan Aren. Angka pada kolom yang sama diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata pada uji lanjut DMRT.
0 b 8 b 72 a 56 a 0 b 0 10 20 30 40 50 60 70 80 Kontrol (K0) Skarifikasi Mekanis (K1)
Skarifikasi Mekanis + NaOCl 1% selama 10 menit(K2) Skarifikasi Mekanis + GA3 100ppm selama 20 menit (K3) Skarifikasi Mekanis + H2SO4 75% selama 10 menit (K4)
% Rata-rata Potensi Tumbuh Maksimum (%)
Hasil  penelitian  perlakuan  Kontrol dan  Skarifikasi  Mekanis  +  H 2 SO 4 75% selama  10  menit  memiliki  nilai  paling rendah hal tersebut karena pada perlakuan kontrol  tidak  dilakukannya  pematahan dormansi sehingga tidak terjadinya pertumbuhan  pada  perlakuan  tersebut.
Sedangkan, perlakuan Skarifikasi Mekanis+  H 2 SO 4 75%  selama  10  menit disebabkan  oleh  kombinasi  perlakuan skarifikasi  mekanis  dengan  perendaman dengan  larutan  H 2 SO 4 75%.  Konsentrasi diduga  berlebihan  dan  larutan  mengenai embrio  benih  sehingga  benih  tidak berkecambah.  Sesuai  dengan  Ismail  dan Duryat  (2018),  perlakuan  yang over treatment (perlakuan  yang  berlebihan) menyebabkan  kerusakan  jaringan  embrio sehingga  benih  tidak  berkecambah  atau mati.  Proses  penyerapan  H 2 SO 4 kedalam benih  ini  mengakibatkan  perubahan  pH pada  embrio  yang  mengakibatkan  proses denaturasi  protein  enzim.  Denaturasi protein  enzim  pada  benih  memicu  gejala kemunduran  benih.  Berdasarkan  hal tersebut dapat diketahui bahwa konsentrasi asam  yang  diberikan  tergantung  pada tingkat  ketebalan  kulit  benih  yang  akan dipatahkan  dormansinya.  Ada  dua  hal yang harus diperhatikan dalam peningkatan konsentrasi asam sulfat yaitu kulit  benih  dan  larutan  asam  agar  tidak
mengenai embrio dalam benih. Tingginya konsentrasi  bahan  kimia  yang  digunakan dapat  menyebabkan  enzim  terdenaturasi dan mematikan aktivasi katalisnya sehingga  benih  menjadi  lemah.  Selain  itu benih  dalam  kondisi  lemah  akan  menjadi sangat  rentan  untuk  terserang  patogen seperti  jamur  dan  bakteri,  sehingga peluang  benih  untuk  terkontaminasi  oleh patogen akan semakin tinggi. Gejala benih mati yang ditemukan dalam penelitian ini antara  lain berupa  endosperm yang sudah habis  (kopong),  busuk  dan  embrio  yang terserang  jamur.  hal  ini  diduga  karena perlakuan dengan konsentrasi yang tinggi, yang  menyebabkan  benih  menjadi  lemah sementara kondisi lingkungan yang lembab  sehingga  jamur  sangat  mudah untuk menyerang benih. Jamur menjadikan  endosperm  benih  sebagai bahan makanannya, endosperm mengandung  karbohidrat  dan  glukosa yang  sangat  disukai  oleh  jamur  sebagai bahan  makanan.  Endosperm  yang  telah habis dimakan oleh jamur akan mengakibatkan  embrio  pada  benih  tidak mampu  untuk  berkecambah  karena  tidak tersedianya energi. Jamur yang menyerang benih  juga  menyebabkan  embrio  benih menjadi  busuk  dan  berwarna  hitam. Munculnya  jamur  tersebut  disebabkan oleh  kondisi  media  perkecambahan  yang
lembab sehingga jamur mudah menyerang benih.  Hal  tersebut  dapat  mengakibatkan embrio  benih  busuk  dan  akhirnya  mati. Widyawati et al . (2009), apokol benih aren yang terinfeksi jamur tidak mampu untuk tumbuh menjadi bibit.

## Panjang akar dan Panjang plumula
Panjang Plumula
Perlakuan  skarifikasi  mekanis  + NaOCl  1%  selama  10  menit  (K 2 ) menghasilkan
Panjang plumula perkecambahan  aren  yang  tertinggi  (4.98 cm)  dan  berbeda  nyata  dengan  perlakuan lainnya (Tabel 4). Hal ini disebabkan oleh suatu  proses  pertumbuhan  dari  hasil pembesaran  dan  diferensiasi  sel  yang dipengaruhi oleh penyerapan air dan unsur hara dari dalam tanah oleh tanaman untuk terbentuknya  jaringan-jaringan  dan  organ tanaman.

## Panjang Akar
Berdasarkan  uji  DMRT  taraf  5% panjang  akar  perkecambahan  benih  aren menunjukkan bahwa perlakuan Skarifikasi Mekanis  +  NaOCl  1%  selama  10  menit (K 2 ) tertinggi yaitu 6.62 cm tidak berbeda nyata dengan perlakuan Skarifikasi
Mekanis + GA 3 100ppm selama 20 menit (K 3 ) yaitu 6.35 cm (Tabel 4).
Hal  ini  diduga  karena  tingginya konsentrasi  larutan  asam  sehingga  kulit benih  dan  larutan  asam  agar  mengenai embrio  dalam  benih  yang  menyebabkan tidak  munculnya  akar  pada  perlakuan tersebut.  Hal  tersebut  sesuai  dengan penelitian Faustina et al., (2011) menyatakan bahwa konsentrasi dan lamanya waktu  perendaman  mempengaruhi  tingkat kerusakan  pada  biji.  Semakin  tinggi konsentrasi  dan  semakin  lama  waktu perendaman  maka  kerusakan  biji  juga semakin  tinggi.  Hasil  Panjang  akar  pada penelitian ini selain dari tingginya konsentrasi larutan diduga terjadinya pengaruh  dari  media  tanam.  Media  tanam tidak mendukung proses perkecambahan biji tanaman  aren.  Perkecambahan  benih  aren diawali  dengan  proses  imbibisi  air  yang diikuti  oleh  pertumbuhan  apokol  pada bagian benih. Posisi embrio pada benih aren terletak  pada  bagian  kiri  atau  kanan punggung  benih  dengan  ciri-ciri  adanya lekukan  berbentuk  bulat  pada  bagian punggung  benih.  Imbibisi  air  pada  benih aren tidak menyebabkan benih membengkak karena  endosperm  benih  aren  yang  sangat keras.

## Tabel 4. Panjang Plumula, dan Panjang Akar pada 120 HSS
Perlakuan Panjang Plumula (cm)  Panjang Akar (cm) Kontrol (K 0 ) 0 c 0 b Skarifikasi Mekanis (K 1 ) 0.5 c 0.61 b Skarifikasi Mekanis + NaOCl 1% selama 10 menit (K 2 ) 4.98 a 6.62 a
Skarifikasi Mekanis + GA 3 100ppm selama 20 menit (K 3 ) 2.33 b 6.35 a
Skarifikasi Mekanis + H 2 SO 4 75% selama 10 menit (K 4 ) 0 c 0 b
Keterangan : Angka-angka diikuti oleh huruf yang sama pada kolom dan  perlakuan yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata berdasarkan uji DMRT pada taraf α = 5%.

## KESIMPULAN
Perlakuan  skarifikasi  mekanis  + NaOCl  1%  selama  10  menit  (K 2 )  efektif dalam pematatahan dormasi dan berpengaruh terhadap perkecambahan biji aren  dapat  dilihat  pada  varibel  laju perkecambahan 18 hari, indeks vigor 24.36 benih  berkecambah/hari  ,  uji  perkecam- bahan, potensi tumbuh maksimum sebesar 72 % , panjang plumula kecambah sebesar 4.98 cm dan panjang akar sebesar 6.62 cm.

## DAFTAR PUSTAKA
Adrian. 2011. Pengaruh Pemberian Hormon BAP Terhadap Multiplikasi Tunas  Tumbuhan  kantong  Senar (Nepenthes  alata Blanco)  pada Media  Murashige  &  Skoog  dengan Teknik  In  Vitro.  [Skripsi].  Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor
Ali H. H., H. Tanveer, M. A. Nadeem, H. N.  Asghar.  2011. Scientific  Note:
Methods to Break Seed Dormancy of Rhynchosia  capitata  a  Summer Annual Weed. J. Chilean Journal 0f Agricultural Research 71(3).
Ardiansyah,  R.,  Supriyanto.,  Wulandari, A.S., Subandy, B., Fitriani, Y. 2014. Teknik sterilisasi eksplan dan
induksi tunas dalam mikropropagasi tembesu Jurnal  Silvikultur  Tropika
5(3): 167-173.
Dinas  Perkebunan  Sumatera  Barat.  2015.
Data dan Statistik Tanaman
Perkebunan. Padang.
Farida.  2017.  Studi  Pematahan  Dormansi
Buah  Aren  ( Arenga  pinnata Merr.) dengan  Skarifikasi  dan  Penggunaan Bahan Kimia Terhadap Perkecambahan Benih. Jurnal Pertanian  Terpadu ,  [S.l.],  Hal.11-
23, Maret 2017. Faustina, E., Prapto, Y., Rohmanti R. 2011. Pengaruh  Cara  Pelepasan  Aril  dan Konsentrasi KNO 3 Terhadap
Pematahan  Dormansi  Benih  Pepaya ( Carica  papaya ). Jurnal  Fakultas Pertanian UGM. Yogyakarta. Hedty.,  Mukarlina.,  Masnur,  T.  2014. Pemberian  H 2 SO 4 dan  Air  Kelapa pada  Uji  Viabilitas  Biji  Kopi Arabika  ( Coffea  arabika L.) J. Protobiont, 3(1): 7-11.
Ismail,  A.  D.,  Duryat,  D.  2018.  Respon
Perkecambahan Benih Kemiri Sunan ( Reutealis Trisperma ) Terhadap Skarifikasi  Kimia  Dengan  Asam Sulfat (H 2 SO 4 ) Pada Berbagai Lama Waktu  Perendaman. Jurnal  Ilmiah Biologi Eksperimen dan Keanekaragaman Hayati (J-BEKH) ,
5 (1), 77-82.
Marsiwi, T. 2012. Beberapa Cara Perlakuan Benih  Aren  (Arenga  pinnata  Merr)
untuk Mematahkan Dormansi. Skripsi. Jurusan Budidaya Pertanian. Fakultas Pertanian. UGM. Yogyakarta. Hal.16 Matana,  YR.  2013.  Pengaruh  penyadapan dan  posisi  tandan  terhadap  mutu benih serta teknik konservasi kecambah  terhadap  pertumbuhan bibit aren ( Arenga pinnata (Wurmb) Merr)  [tesis].  Bogor  (ID):  Institut Pertanian Bogor.
Nugroho.,  Triyanto,  A.,  Salamah,  Z.  2015. Pengaruh  lama  perendaman  dan konsentrasi  Asam  Sulfat  (H 2 SO 4 ) terhadap perkecambahan Biji Sengon  Laut. JUPEMASI (2)1:hal. 230-236.
Oben..,  Bintoro.,  Riniarti.,  Melya.  2014.
Pengaruh  Perendaman  Benih  pada Berbagai  Suhu  Awal  Air  terhadap Viabilitas Benih Kayu Afrika ( Maesopsis  eminii ).  Jurnal Sylva Lestari (2)1:101-108.
Pratiwi,  I.  2016.  Pengaruh  Skarifikasi  dan Lama  Perendaman  dengan  Asam Sulfat (H 2 SO 4 ) Terhadap Pematahan Dormansi  Benih  Enau  (Arenga pinnata  Merr.)  [Skripsi].  Fakultas
Pertanian Universitas Andalas. Padang. Silalahi,  M.  2017.  Pengaruh  Asam  Kuat, Pengamplasan, Dan Lama Perendaman Terhadap Laju Imbibisi Dan  Perkecambahan  Biji  Aren
(Arenga pinnata) . Journal of Biology (Al-Kauniyah ), 10 (2). pp. 73-82.
Sitohang,  DEP.  2019.  Pengaruh  Pemberian
Air  Kelapa  Terhadap  Pertumbuhan
Bibit Tanaman Aren (Arenga
Pinnata). Kumpulan  Karya  Ilmiah
Mahasiswa  Fakultas  sains  dan
Tekhnologi , 1 (1), 6-6.
Sutopo  L.  2012.  Teknologi  Benih.  Edisi
Revisi. Rajawali Pers. Jakarta.
Tanjung,  SA.,  Lahay,  RR.  2017.  Pengaruh
Konsentrasi Dan Lama Perendaman Asam Sulfat Terhadap Perkecambahan  Biji  Aren  (Arenga
pinnata Merr.). Jurnal Online Agroekoteknologi , 5 (2), 396-408.
Tikafebiati,  L.,  Anggraeni,  G.,  Windriati,
RDH.  2019.  Pengaruh  hormon giberelin  terhadap  viabilitas  benih stroberi  (Fragaria  x  Ananassa).
Agroscript . 1 (1) : 29 – 35.
Widajati,  E.,  Murniati,  E.,  Palupi,  E.  R., Kartika,  T.,  Suhartanto,  M.  R., Qadir,  A.  2013.  Dasar  ilmu  dan teknologi  benih.  PT  Penerbit  IPB Press. Bogor.
Widyawati, N. 2011. Sukses Investasi Masa
Depan  Dengan  Bertanam  Pohon Aren.  Ed.  I.  Yogyakarta:  Lily
Publiser. Hal. 104.
Widyawati,  N.,  Tohari,  P.  Yudono, Soemardi, I. 2009. Permeabilitas dan perkecambahan  benih  aren  (Arenga pinnata  (Wumb.)  Merr.). Jurnal Agronomi Indonesia : hal 152-158.
Yudono,  P.  2012.  Pembenihan  Tanaman.
Gadjah  Mada  University  Press.
Yogyakarta. 344 hal.