## Borneo Journal Of Medical Laboratory Technology

## PENDAHULUAN
Laboratorium  adalah  suatu  tempat  atau  ruangan  yang berfungsi  untuk  melakukan  kegiatan  penelitian, pembelajaran,  dan  percobaan  yang  dilengkapi  dengan berbagai macam peralatan dan bahan yang mendukung pekerjaan  tersebut.  Menurut  PERMENPAN  No.  3 Tahun  2010  disebutkan  bahwa  laboratorium  adalah unit  penunjang  akademik  pada  lembaga  pendidikan, berupa ruang tertutup atau terbuka, bersifat permanen atau  bergerak.  Salah  satunya  adalah  laboratorium mikrobiologi  sebagai  tempat  untuk  kegiatan  penelitian dan  percobaan  yang  memerlukan  kondisi  ruangan dalam  keadaan  steril.  Pada  kondisi  tersebut,
kontaminasi  dapat  terjadi  pada  udara,  peralatan, perlengkapan,  dan  air  yang  dapat  berasal  dari mikroorganisme  salah  satunya  adalah  bakteri.  Oleh karena  itu  harus  diperhatikan  dan  dikendalikan kemungkinan-kemungkinan  terjadinya  penyebaran kontaminasi  secara  langsung  dan  tidak  langsung (Permenpa No. 03 tahun 2010).
Kontaminasi  akibat  mikroorganisme  yang  tersebar  di dalam  ruangan  dapat  disebabkan  oleh  jamur  dan bakteri  yang  dapat  berasal  dari  dalam  ruangan  atau kondisi  banyak  orang  ( crowded ).  Menurut  penelitian Wismana  (2015),  faktor  yang  dapat  mempengaruhi kontaminasi  dalam  ruangan  salah  satunya  adalah

## IDENTIFIKASI BAKTERI PADA NUTRIENT AGAR PLATE DI LABORATORIUM MIKROBIOLOGI UNIVERSITAS MUHAMMADIYAH PALANGKA RAYA

## Identification Of Bacteria On Nutrient Agar Plate At The Universitas Muhammadiyah
Palangkaraya’s Microbiology Laboratory
Windya Nazmatur Rahmah 1*
Fera Sartika 2
Yuda Ednisa Sri Madureni 3
*1 Universitas Muhammadiyah Palangkaraya, Palangka Raya, Indonesia
2 Universitas Muhammadiyah Palangkaraya, Palangka Raya, Indonesia
3 Universitas Muhammadiyah Palangkaraya, Palangka Raya, Indonesia *email: windy.nazmatur@gmail.com

## Abstrak
Laboratorium adalah suatu tempat atau ruangan yang berfungsi untuk melakukan  kegiatan  penelitian,  pembelajaran,  dan  percobaan  yang  dilengkapi dengan  berbagai  macam  peralatan  dan  bahan  yang  mendukung  pekerjaan tersebut.  Penelitian  bertujuan  untuk  mengidentifikasi  bakteri  pada nutrient  agar plate di  Laboratorium  Mikrobiologi  Universitas  Muhammadiyah  Palangkaraya. Peneliti  menggunakan  jenis  penelitian  observasional  teknik  non  probability sampling  dengan  desain  penelitian  cross  sectional.  Peneliti  melakukan pengambilan  sampel bakteri  dalam  beberapa  titik  menggunakan  media nutrient agar  di  ruang  laboratorium  mikrobiologi.  Hasil  penelitian  menunjukan  bahwa pada  biakkan  di  media  Nutrient  Agar  sebanyak  12  cawan  petri,  hasil  yang  di peroleh  adalah  100%  ada  pertumbuhan  bakteri.  Bakteri  yang  diidentifikasi menggunakan  metode  pewarnaan  gram  didapatkan  jenis  bakteri Streptococcus gram  negatif  41,7%,  Staphylococcus  gram  negatif  41,7%  dan  Staphylococcus gram positif 16,7%.

## Kata Kunci:
Bakteri, Nutrient Agar Plate,
Laboratorium Mikrobiologi
Keywords :
Bacteria, Nutrient Agar Plate, Microbiology Laboratory

## Abstract
A  laboratory  is  a  place  or  room  that  functions  to  carry  out  research,  learning,  and experiment  activities  equipped  with  various  kinds  of  equipment  and  materials  that support  the  work.  This  study  aims  to  identify  bacteria  on nutrient  agar  plate  at  the Universitas  Muhammadiyah  Palangkaraya ’s  Microbology  Laboratory .  This  study  uses the  type  of  observational  research  with  a  non-probability  sampling  technique  with  a cross-sectional research design. Bacterial samples were taken at several points using nutrient agar plate in the microbiology laboratory room. The results showed that when cultured on Nutrient Agar media in 12 glass of petri, the results obtained were 100% bacterial  growth.  Bacteria  identified  using  the  gram  staining  method  received  41.7% gram-negative  Streptococcus  bacteria,  41.7%  gram-negative  Staphylococcus,  and 16.7% gram-positive Staphylococcus.
kelembaban  yang  diakibatkan  oleh  kepadatan  populasi dan  tingginya  aktivitas  manusia  dengan  meningkatkan konsentrasi bakteri udara. Dalam penelitian Despita, et al (2021)  menyatakan  bahwa  dalam  kondisi laboratorium dengan padatnya aktivitas, hasil penelitian maupun  praktikum  sering  kali  terjadi  kontaminasi bakteri yang mengganggu hasil pengamatan, kontaminasi  tersebut  dapat  disebabkan  karena  kerja yang  tidak  steril  dan  kualitas  udara  di  dalam  ruangan yang kurang baik.
Hasil  penelitian  yang  dilakukan  Sommeng  (2019) tentang identifikasi bakteri udara didapatkan hasil jenis bakteri  yang  ditemukan  yaitu  bakteri  Enterobacter aglomerans,  Enterobacter  alomerans,  Escherichia  coli, Klebsiella  pneomoniae,  sedangkan  penelitian  yang dilakukan  Despita, et  al (2021)  ditemukan  terdiri  dari empat  kelompok  yaitu  bakteri  gram  negatif,  kokus gram positif, batang gram positif, kokus gram negatif. Dalam  pengamatan  di  Laboratorium  Mikrobiologi Universitas  Muhammadiyah  Palangkaraya  dengan intensitas  aktivitas  yang  padat  dapat  membuat  hasil praktikum  serta  penelitian  kontaminasi  yang dipengaruhi oleh jumlah penggunanya, dimana semakin banyak  jumlah  pengguna  maka  akan  semakin  banyak jumlah bakteri yang berada didalamnya.
Berdasarkan  latar  belakang  di  atas,  maka  akan dilakukan  penelitian  tentang  identifikasi  bakteri  pada media  nurtient  agar  di  Laboratorium  Mikrobiologi Universitas Muhammadiyah Palangkaraya.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  ini  menggunakan  metode  penelitian observasional desain penelitian cross sectional. Peneliti akan  melakukan  pengambilan  sampel  bakteri  dalam beberapa  titik  menggunakan  media  nutrient  agar  di ruang  laboratorium  mikrobiologi  di  Universitas Muhammadiyah  Palangkaraya,  untuk  mencari  bakteri berdasarkan  pemeriksaan  mikrobiologi  dengan  cara isolasi,  identifikasi  dan  pewarnaan  gram.  Sampel  yang digunakan  adalah  bakteri  udara  yang  berada  didalam
Laboratorium Mikrobiologi Universitas Muhammadiyah Palangkaraya yang diambil dengan metode setting plate.
Cawan petri diletakkan dengan kondisi terbuka selama 15 menit dengan 12 titik yang diambil dalam 3 waktu, yaitu pagi pukul 07.30; 12.30; 15.30.
Gambar 1 . Letak isolasi bakteri
Prinsip  dengan  metode  setting  plate  adalah memaparkan  cawan  petri.  Dengan  perlakukan  isolasi, idetifikasi makroskopis, identifikasi mikroskopis dan uji biokimia. Pengamatan dilakukan setelah diinkubasi pada suhu 37 ⸰ C selama 24 jam.
Teknik  isolasi  bakteri  mengikuti  cara  kerja  (Kurniati, et.,al 2018) dengan beberapa penyesuaian. Pada setiap ruangan, dipaparkan dua belas cawan petri. Pemaparan dilakukan selama 15 menit dan diletakkan 80-100 cm di atas  lantai  serta  berjarak  100-150  cm  dari  dinding. Pemaparan  cawan  petri  ini  dilakukan  dalam  tiga periode.  Periode  pertama  pada  jam  07.30  WIB (sebelum  kegiatan  belajar  mengajar  dimulai).  Periode kedua pada jam 12.30 WIB (pada saat kegiatan belajar mengajar  berlangsung)  dan  periode  ketiga  pada  jam 15.00  WIB  (setelah  kegiatan  belajar  mengajar berakhir).  Selanjutnya,  cawan  petri  ditutup  dan dikemas ( sealed ), lalu dibawa kedalam incubator untuk selanjutnya  diinkubasi  pada  suhu  37ºC  selama  24  jam. Identifikasi makroskopik dilakukan dengan pengamatan secara  langsung  menggunakan  colony  counter. Diperhatikan  bentuk  morfologi  koloni,  dan  dihitung
jumlah  koloni  yang  tumbuh.  Selanjutnya  hasil pengamatan  tersebut  difoto  dan  dicatat  ciri-  ciri morfologi koloni bakteri yang terbentuk.
Identifikasi  mikroskopik  bakteri  dilakukan  terhadap koloni  bakteri  yang  telah  ditentukan  dengan  cara pewarnaan  gram.  Setelah  itu  diamati  dibawah mikroskop.  Kemudian  dilakukan  uji  biokimia berdasarkan  bentuk  sel  bakteri  yang  diperoleh (Cappuccino & Sherman 2010).
Pada penelitian ini data dari hasil uji laboratorium akan dilakukan  penggelompokkan  dan  ditabulasi  dengan menggunakan  hasil  dari  uji  makroskopis,  mikroskopis dan  uji  biokimia  yang  mana  akan  diambil  kesimpulan akhir  untuk  mengidentifikasi  dari  bakteri  yang didapatkan di Laboratorium Mikrobiologi.

## HASIL DAN PEMBAHASAN HASIL
Hasil  identifikasi  bakteri  menggunakan nutrient  agar plate di  laboratorium  mikrobiologi  Universitas Muhammadiyah  Palangka  Raya  dapat  disajikan  dengan data  hasil  penelitian  meliputi  karakteristik  sampel, identifikasi  morfologi  koloni,  hasil  uji  biokimia,  dan pewarnaan gram.
Karakteristik  sampel  yang  didapatkan  dari  12  cawan yang  telah  diisolasi  dan  diinkubasi,  seluruhnya ditemukan  pertumbuhan  bakteri.  Pada  penelitian  ini, pengambilan  sampel  menggunaan  teknik  setting  plate. Hasil isolai bakteri dapat diliahat pada Table 1 sebagai berikut:
Tabel 1. Karakteristik Sampel Total Sampel (n) Media Pertumbuhan koloni 12 Nutrient agar Ada (100%)
Berdasarkan  pada  Tabel  1  diatas  telah  diperoleh  hasil adanya  pertumbuhan  koloni  bakteri  pada  12  cawan yang  telah  dilakukan  isolasi  dengan  menggunakan metode setting plate pada media nutrient agar plate.
Berdasarkan  hasil  isolasi  bakteri  yang  menggunakan media  nutrient  agar  dengan  metode  cawan  terbuka ( eksposure plate ), dilakukan inkubasi selama 24 – 48 jam. Setelah dilakukan inkubasi, terlihat koloni bakteri yang tumbuh  pada  medium  cawan  petri  tersebut.  Koloni tersebut  diamati  morfologinya  berdasarkan  bentuk, tepian,  warna,  dan  elevasi.  Hasil  identifikasi  dapat dilihat pada Table 2 sebagai berikut:
Tabel 2. Uji Makroskopis No Karakter Morfologi Bakteri 1 Ukuran koloni Kecil (10 koloni) *c.1,2,3,4,5,6, 9,10,11,12 Sedang (2 koloni) *c.7 dan c.8 2 Bentuk koloni Bulat (12 koloni) 3 Warna koloni Putih (10 koloni) *c.1,2,3,4,5,6, 9,10,11,12 Kuning (2 koloni) *c.7 dan c.8 4 Elevasi Convex (12 koloni) 5 Tepi koloni Entire (12 koloni) 6 Sifat permukaan koloni Smoth (12 koloni)
Hasil  pengamatan  karakter  morfologi  koloni  bakteri udara  dari  ruang  labboratorium  mikrobiologi menunjukan  karakter  yang  bervariasi.  Koloni  bakteri yang  tumbuh  dilihat  dan  dikarakterisasi  berdasarkan beberapa kriteria yang meliputi ukuran koloni, bentuk koloni, elevasi, tepi koloni dan sifat permukaan koloni. Berdasarkan  beberapa  kriteria  diatas,  maka  diketahui bahwa  ruang  laboratorium  mikrobiologi  mayoritas dihuni  oleh  bakteri  dengan  ukuran  kecil  (10  koloni), sedang  (2  koloni),  bentuk  koloni  bulat  (12  koloni), warna  koloni  putih  (10  koloni) dan  kuning  (2  koloni), elevasi  convex  (12  koloni),  tepian  koloni  entire  (12 koloni),  sifat  permukaan  koloni  smoth  (12  koloni). Menurut  penelitian  Widya  Rahma  (2021)  ditemukan hasil  karakteristik  koloni  dengan  ukuran  kecil,  bentuk koloni  bulat  titik  kecil,  warna  koloni  opaque,  elevasi resied,  tepian  koloni  entire,  sifat  permukaan  koloni smoth  berkilau.  Adanya  perbedaan  hasil  dengan
penelitian  lain  mungkin  disebabkan  oleh  perbedaan tempat penelitian dan jumlah aktivitas.
Uji  biokimia  merupakan  suatu  metode  atau  perlakuan yang dilakukan untuk mengidentifikasi dan memfermentasi suatu biakan bakteri untuk menggetahui hasil isolasi melalui sifat-sifat fisiologinya.uji  biokimia  aktivitas  sel  bakteri  untuk identifikasi meliputi uji VP, MR, Simmons citrate, urase, SIM,  TSIA,  katalase  dan  uji  fermentasi  karbonhidrat. Hasil uji biokimia dapat diliahat pada Tabel 3 sebagai berikut:
Tabel 3. Uji Biokimia
Keterangan: a/a: alkali/alkali  +: positif d/d: acid/acid -: negatif
Gambar 2 . Hasil Uji Biokimia
Pada  Tabel  3  menunjukkan  hasil  uji  biokimia menunjukan  hasil  yang  bervariasi  pada  uji  TSIA,  uji produksi  H2S  dan  gas  didapatkan  hasil  isolat  bakteri menunjukan  hasil  negatif  yaitu  dengan  tidak  adanya perubahan  warna  pada  medium,  sedangkan  pada  uji lereng dan dasar didapatkan hasil yang bervariasi, pada cawan  1  dan  6  didapatkan  hasil  acid/acid,  pada  cawan 2, 3, 5, 7, 8, 9, 11, 12 didapatkan hasil alkali/alkali, dan pada cawan 4 dan 10 didapatkan hasil acid/alkali.
Pada uji SIM didapatkan hasil yang bervariasi dimana uji sulfur menunjukan hasil negatif, uji motil pada cawan 1, 3, dan 4 menujukan hasil positif, sedangkan pada cawan 2, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12 menunjukan hasil negatif dan pada  uji  indol  menunjukan  hasil  negatif.  Jadi  bakteri tersebut  tidak  mampu  mendegradasi  asam  amino triptofan  sehingga  tidak  menghasilkan  indol,  jika  uji indol positif ditandai dengan terbentuknya lapisan tipis seperti cincin berwarna merah.
Uji  simmons  citrate  terhadap  isolat  bakteri menunjukan hasil negatif dimana bakteri tersebut tidak dapat memfermentasikan asam (simmons citrate), yang ditunjukan dengan tidak adanya perubahan warna pada medium (tetap berwarna hijau).
Uji  urea  terhadap  isolat  bakteri  menunjukan  sebagain kecil  bakteri  dapat  menghidrolisis  urea  dengan  enzim urase  yang  ditunjukan  dengan  adannya  perubahan warna  jinga  menjadi  merah  unggu  pada  medium, sedangkan isolat bakteri yang tidak dapat menghidrolisis  urea  dengan  enzim  urase  yang ditunjukan  dengan  tidak  adanya  perubahan  warna jingga menjadi warna merah unggu pada medium.
Uji  katalase  terhadap  isolate  bakteri  menunjukan sebagian  kecil  isolate  bakteri  mampu  memproduksi enzim  katalase,  yang  ditunjukan  dengan  adanya gelembung udara setelah bakteri ditetesi larutan H2O2 dengan  hasil  katalase  positif.  Uji  katalase  dengan  hasil positif ditemukan pada cawan 1, 3, 4, 6, 9, 11, dan 12 yang  mana  dari  pengamatan  mikroskopis  koloni tersebut ditemukan bakteri dengan bentuk coccus. Uji  methyl  red  (MR)  terhadap  isolate  bakteri menunjukan  semua  isolasi  bakteri  tidak  dapat memfermentasikan  glukosa  untuk  menghasilkan  asam yang  ditunjukan  dengan  adanya  warna  kuning  pada media.  Pada  Uji  voges  Proskauer  (VP) terhadap  isolat bakteri  menunjukan  hasil  negatif  artinya  bakteri menunjukan  tidak  dapat  memproduksi  acctylmethyl carbinol  dari  fermentasi  glukosa  ditunjukan  dengaan adanya warna kuning pada medium.
Uji  fermentasi  karbohidrat  terhadap  isolat  bakteri menunjukann hasil yang bervariasi pada cawan 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 9, 10, 11, menunjukan isolat bakteri mampu memfermentasikan  glukosa,  sedangakan  cawan  8  dan 12  menunjukan  isolat  bakteri  tidak  mampu memfermentasikan glukosa. Uji manitol pada cawan 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 12, menunjukan hasil negatif, sedangkan pada cawan 12 menunjukam hasil positif. Uji sukrosa pada cawan 1, 2, 6, 9, 10, 11, 12, menunjukan hasil  negatif,  sedangkan  pada  cawan  3,  4,  5,  7, menunjukan  hasil  positif.  Uji  laktosa  pada  cawan  3,  6, 8,  9,  10,  11,  12,  menunjukan  hasil  negatif,  sedangkan pada cawan 1, 2, 4, 5, 7, menunjukan hasil positif. Uji maltosa pada cawan 1, 2, 4, 5, 7, 8, 10, 11, menunjukan hasil  positif  sedangkan  pada  cawan  3,  6,  9,  12, menunjukan hasil negatif.
Pada penelitian ini sejalan dengan penelitian Fallo G & Sine  Y  pada  tahun  2016  yang  menunjukkan  hasil  uji biokimia yang beragam. Hasil uji biokimia dan fisiologi koloni  diketahui  uji  indol  negatif,  MR  negatif,  VP negatif,  SC  negatif,  urease  negatif,  dan  fermentasi karbohidrat beberapa positif.
Pada penelitian ini didapat hasil identifikasi pewarnaan gram  pada  koloni  bakteri  yang  tumbuh  di  cawan  yang telah  dilakukan  perlakukan  setting  plate.  Identifikasi pewarnaan  gram  dilihat  dari  hasil  pengecatan  gram bakteri dengan hasil dapat dilihat pada Table 4 sebagai berikut:
Tabel 4. Hasil Identifikasi Pewarnaan Gram No Bentuk Klasifikasi Jumlah (n) Persentase (%) 1 Coccus Gram negatif 7 58,3 2 Coccus Gram positif 3 25,0 3 Basil Gram positif 2 16,7
Pada Tabel  5 ,  distribusi  sampel  berdasarkan  hasil pewarnaan  gram  dan  identifikasi  secara  mikroskopis pada 12 sampel ditemukan keseluruhan bakteri sebagai berikut:
Tabel  5. Distribusi  Sampel  Berdasarkan  Hasil Pewarnaan Gram
Jenis bakteri Genus Jumlah (%) Gram positif Staphylococcus sp 2 (16,7%) Gram negatif Strepthococcus sp 5 (41,7%) Staphylococcus sp 5(41,7%)
Hasil  pewarnaan  gram  dari  semua  koloni  bakteri menunjukan adanya tiga kelompok bakteri yaitu bakteri bentuk coccus gram negatif, coccus gram positif, basil gram positif, dapat dilihat dari Table diatas yang mana hasil  presentase  kelompok  bakteri  yang  paling  tinggi adalah  bakteri  bentuk  coccus  gram  negatif  58,4%, sedangkan  yang  presentasenya  paling  rendah  adalah bakteri  bentuk  batang  gram  positif  yang  mencapai 16,7%. Menurut penelitian Tindas (2016) bakteri Gram negatif  banyak  ditemukan  karena  bakteri ini  berada  di udara dan di lantai di waktu pagi dan sore hari, hal ini dapat  disebabkan  oleh  kontaminasi  udara  dengan pengunjung  atau  pengguna  ruangan.  Infeksi  yang  dapat disebabkan  oleh  bakteri  gram  negatif  seperti  saluran pernafasan,  infeksi  saluran  kemih  (ISK),  infeksi  mata. Pada  penelitian  Japanto  (2016)  ditemukan  bakteri kokus Gram negatif pada perabotan atau alat-alat yang ada pada ruangan.
Pada  Tabel  4  hasil  pengamatan  dari  pewarnaan  gram didapatkan 2 cawan (16,7%) dengan pewarnaan koloni bakteri  gram  positif  yang  berbentuk  coccus  dengan penegasan  uji  katalase  positif  pada  koloni  tersebut diduga  termasuk  dalam  genus  Staphylococcus  sp. Dilihat  dari  persentase  pewarnaan  gram  pada  cawan berikutnya, ditemukan bakteri gram negatif berbentuk coccus sebanyak 5 cawan (41,7%) dengan penegasan uji katalase  negatif  pada  koloni  tersebut  dan  diduga termasuk pada genus Streptococcus sp serta 5 cawan (41,7%)  dengan  penegasan  uji  katalase  positif  diduga termasuk dalam genus bakteri Staphylococcus sp. Pada  hasil  pengamatan  tersebut  ditemukan  bakteri berbentuk  Streptococcus  dan  Staphylococcus  yang merupakan  gram  positif,  namun  pada  usia  tertentu dapat  berubah  menjadi  gram  negatif,  hal  ini  disebut gram  variable.  Menurut  Kurniati,  et  al  (2018) menyatakan  bahawa  gram  variable  merupakan  bakteri
yang memiliki sifat intermedier antara gram positif dan negatif,  sehingga  kadang-kadang  bersifat  gram  postif, kadang-kadang  bersifat  negatif  dengan  faktor-faktor yang  mempengaruhi  seperti  perubahan  keasaman, apabila  pH  turun  kemungkinan  bakteri  gram  positif dapat  berubah  menjadi  gram  negatif,  demikian  pula sebaliknya.  Penyimpangan  cat  pewarnaan,  misalnya pencucian  yang  terlalu  lama,  dapat  menyebabkan bakteri-bakteri  gram  positif  memberikan  hasil  gram negatif.  Faktor  medium  juga  mempengaruhi,  bakteri gram  positif  lemah  apabila  terlalu  lama  ditumbuhkan dalam  medium  yang  mengandung  bahan  yang  mudah difermentasi,  dapat  berubah  menjadi  gram  negatif. Umur bakteri, bakteri-bakteri gram positif yang terlalu tua  akan  kehilangan  nutrisi,  sehingga  dapat  berubah menjadi negatif. Perlakuan khusus, bakteri gram positif yang bagian-bagian selnya (jenis-jenis lemak, karbonhidrat,  protein)  dihilangkan  dengan  melarutkan dalam  air  panas,  eter  atau  larutan ribonuclease, dapat berubah  menjadi  gram  negatif  apabila  ditambahakan dengan  larutan  pekat  DNA  dapat  berubah  menjadi gram  positif,  misalnya  Escherichia  coll  (Kurniati,  et.,al 2018).
Pada  penelitian  Despita,  et  al  (2021)  diketahui  bahwa jenis  bakteri  udara  yang  ditemukan  terdiri dari  empat kelompok  yaitu  batang  gram  negatif  (15,3%),  kokus gram  positif  (20,4%),  batang  gram  positif  (22,4%)  dan kokus  gram  negatif  (41,8%)  yang  mana  menunjukkan terdapat  pengaruh  usia  bakteri  terhadap  hasil persentase pewarnaan gram bakteri.

## KESIMPULAN
Berdasarkan  penelitian  yang  dilakukan,  maka kesimpulan yang dapat diambil adalah Sampel bakteri di ruang  laboratorium  mikrobiologi  yang  dibiakkan  di media  nutrient  agar  sebanyak  12  cawan  petri,  hasil yang di peroleh adalah 100% ada pertumbuhan.
Bakteri  yang  diidentifikasi  di  ruang  laboratorium menggunakan  metode  pewarnaan  gram  bersifat  gram negatif  dan  gram  positif. Jenis  bakteri  yang  didapatkan
adalah  bakteri  Streptococcus  gram  negatif  41,7%, Staphylococcus gram negatif 41,7% dan Staphylococcus gram positif 16,7%.

## DAFTAR PUSTAKA
Cappucino,  J.  G.,  &  Sherman,  N.  (2009).  Manual Laboratorium  Mikrobiologi  Edisi  8.  Jakarta:  Penerbit Buku Kedokteran EGC.
Despita, W. R., Kurniawan & Sudarsono, T. A. (2021). Studi  Komparasi  Kuliatas  Bakteriologis  Udara  Pada Laboratorium  Terpadu  Universitas  Muhammadiyah Purwokerto. Jurnal Pendidikan dan Biologi. Vol. 13 No. 2.
Fallo,  G.,  &  Sine,  Y.  (2016).  Isolasi  dan  Uji  Biokimia Bakteri  Selulolitik  Asal  Saluran  Pencernaan  Rayap Pekerja  ( Macrotermes  spp. ).  Jurnal  Pendidikan  Biologi. Vol. 1. No. 2
Japanto, A.S., Standy, S., & Fredine, E. (2016). Isolasi an Identifikasi Bakteri Aerob ang Berpotensi
Menyebabkan Infeksi Nosokomial di Ruang Rawat Inap Mata  Irina  F  RSUP  Prof.  DR.  R.D.  Kandou  Manado. Jurnal e-Biomedik. Vol. 4 (1).
Kurniati,  T.  H.  (2018).  Penuntun  Praktikum Mikrobiologi. Uniersitas Negeri Jakarta. Jakarta
Kuswiyanto.  (2015).  Bakteriologi  1:  Buku  Ajar  Analis Kesehatan. Jakarta: EGC.
Permenpan.  (2010).  Jabatan  Fungsional  Pranata Laboratorium  Pendidikan  dan  Angka  Kreditnya. Jakarta.
Sommeng,  F.  (2019).  Identifikasi  Bakteri  Udara  di Ruang Operasi dengan Bakteri Pada Luka Infeksi Pasien Pasca Operasi di Rumah Sakit Ibnu Sina. Umi Medical Journal. Vol. 4. No. 1.
Tindas,  K.A.,  Heriyannis,  H.,  &  Jhon,  P.  (2016).  Pola Bakteri  Aerob  yang  Berpotensi  Menyebabkan  Infeksi Mosokomial  di Kamar  Operasi  RSAD  Robert  Wolter Mongisidi Manado. Jurnal e-Biomedik. Vol 4 (2).
Wismana.  (2016).  Gambaan  Kualitas  Mikrobiologi Udara  Kamar  Operasi  dan          Keluhan  Kesehatan. Jurnal Kesehatan Lingkungan. Vol 8 (2):220-221.