# Korespondensi:  Balai  Riset  Perikanan  Budidaya  Air  Payau  dan Penyuluhan  Perikanan.  Jl.  Makmur  Dg.  Sitakka  No.  129,  Maros, Sulawesi  Selatan  90512,  Indonesia.
Tel.:  +  62  411  371544 E-mail:  ic_ast@yahoo.co.id
Tersedia  online  di:  http://ejournal-balitbang.kkp.go.id/index.php/ma

## SALMON GONADOTROPIN RELEASING HORMONE ANALOGUE STIMULASI PEMATANGAN SPERMATOFOR UDANG WINDU (Penaeus monodon) APKIRAN TANPA ABLASI
Ike  Trismawanti # ,  Agus  Nawang,  dan  Asda  Laining
Balai Riset Perikanan Budidaya Air Payau dan Penyuluhan Perikanan Jl. Makmur Dg. Sitakka No. 129, Maros, Sulawesi Selatan 90512
(Naskah diterima: 7 Desember 2017; Revisi final: 6 April 2018; Disetujui publikasi: 14 Mei 2018)

## ABSTRAK
Penggunaan induk pada pembenihan udang windu pada dasarnya hanya untuk periode yang singkat dan selanjutnya induk udang windu diapkir baik betina maupun jantan. Tujuan penelitian ini untuk mengevaluasi efek injeksi hormon kombinasi salmon gonadotrophin releasing hormone analogue (sGnRH-a) dan domperidone terhadap  karakteristik  spermatofor  induk  udang  windu,  Penaeus  monodon  yang  telah  diapkir  dari  unit pembenihan  tanpa ablasi  tangkai  mata.  Dua  tahap  penelitian  dilakukan pada  udang  windu  jantan  yang diapkir dari unit pembenihan. Tahap pertama terdiri atas dua dosis 0,1 (OV-1) dan 0,2 (OV-2) mL/kg bobot udang dan ablasi mata (AB) sebagai kontrol. Pada tahap ke-2, dosis yang diaplikasikan adalah dosis terbaik dari tahap ke-1 (OV-3) dan ablasi sebagai kontrol (AB). Induk jantan apkir ditebar masing-masing dengan kepadatan 14 ekor  untuk tahap ke-1 dan 12 ekor  pada tahap kedua. Injeksi dilakukan  tiga kali dengan interval satu minggu untuk kedua percobaan tersebut. Seminggu setelah suntikan terakhir, induk jantan diberi kejutan listrik untuk mengeluarkan spermatofornya. Pada percobaan pertama, jumlah induk jantan yang  mengeluarkan  spermatofor  pada  maturasi  dan  rematurasi  pertama  lebih  banyak  ditemukan  pada perlakuan OV-2 daripada OV-1 dan AB. Induk jantan pada perlakuan OV-3 pada tahap ke-2 menghasilkan lebih  banyak  spermatofor  (58,3%)  dibandingkan  dengan  AB  (50%).  Hubungan  antara  bobot  badan  dan bobot  spermatofor  untuk  total  data  pada  tahap  ke-1  sifatnya  linier  dengan  nilai  r=  0,74  sedangkan hubungan antara bobot spermatofor dan jumlah spermatozoa sifatnya tidak linier dengan nilai r= 0.14. Induk apkiran jantan udang windu masih dapat memproduksi spermatofor melalui stimulasi injeksi hormon sGnRH-a pada dosis 0,2 mL/kg bobot udang relatif lebih banyak dibandingkan ablasi.
KATA KUNCI: sGnRH-a; spermatofor; jantan apkiran; udang windu
ABSTRACT: Use of Salmon gonadotropin releasing hormone analogue to stimulate spermatophores maturation of hatchery-discarded male tiger shrimp (Penaeus monodon). By: Ike Trismawanti, Agus Nawang, and Asda Laining
Broodstocks in black tiger hatcheries are commonly used for only a short period of time. Both female and male broodstocks are discarded due to reduced spawning frequencies. This recent study was an effort to explore whether discarded broodstocks could be re-maturated without eyestalk ablation. For the research purpose, a two-stage experiment was conducted on discarded male tiger shrimps to evaluate the effect of sGnRH-a injection on the shrimp reproductive performances. In the first stage, the experiment consisted of injection treatment of different doses of sGnRH-a at 0.1 (OV-1) and 0.2 (OV-2) mL/kg and eyestalk ablation (AB) as a control. For the second stage, the treatment consisted of injection of sGnRH-a optimum dose obtained from the first trial (0.2 mL/kg shrimp (OV-3) and ablation as the control (AB). The treated male stocks were then randomly placed in concrete tanks with a density of 14 males/tank for the first stage and 12 males for the second stage. The injections were carried-out three times with an interval of one week for both stages. A week after the last injection, males were electrically shocked to release their spermatophores. In the first stage, the number of males releasing spermatophores at maturation and first re-maturation was higher in OV-2 treatment than that of OV-1 and AB treatments. In the second trial, the number of males in OV-3 treatment released more spermatophore (58.3%) compared to AB which was 50%. The body and spermatophore weights correlation of the
discarded tiger shrimp in the first trial followed a positive linear with an r-value of 0.74. However, the spermatophore weight and the sperm cell number was not positively correlated with an r-value of 0.14. The discarded male tiger shrimps produced a relatively higher spermatophore when induced with sGnRHa at a dose of 0.2 mL/kg than those of shrimp treated with ablation.

## KEYWORDS: sGnRH-a; spermatophore; discarded male; tiger shrimp
Jenis hormon yang diketahui mampu menstimulasi perkembangan  gonad  ikan  di  antaranya  adalah kombinasi antara human chorionic gonadotropin (hCG), salmon pituitary extract (SPE) dan gonadotropin releas- ing hormone analogue (GnRHa) pada ikan sidat (Kagawa et al., 2013), dan oocite developer (Laining et al., 2015; Prasetyo et al., 2017; Ramdani, 2013) serta gonadotro- pin releasing hormone dan dopamine (Tinikul et al., 2014) pada  krustase.  Hormon  sintetis  lainnya  yang  sudah secara luas diaplikasikan pada ikan dan krustase adalah kombinasi salmon gonadotropin releasing hormone ana- logue (sGnRH-a) dengan domperidone atau yang populer dikenal dengan nama ovaprim (Cejko et al., 2012; Genz et  al.,  2014;  Jamroz  et  al.,  2008;  Zadmajid,  2016). Penelitian  terkini  pada  udang  windu  jantan  hasil budidaya  menunjukkan  bahwa  hormon  kombinasi sGnRH-a  dan  domperidone  dapat  diaplikasikan  pada konsentrasi 0,1-0,2 mL/kg udang windu (Laining et al., 2016).  Pada  penelitian  tersebut,  injeksi  pada konsentrasi 0,1 mL/kg diperoleh jumlah induk yang menghasilkan spermatofor sebanyak 80,8% lebih tinggi dari induk yang diablasi sebesar 46,1% dan pada dosis 0,2 mL/kg; berat spermatofor udang lebih besar (0,155 g) dibandingkan dosis lainnya.
Mengingat masa penggunaan induk udang windu di  unit  pembenihan  seharusnya  perlu  diperpanjang khususnya induk jantan, maka perlu dilakukan kajian mengenai performa reproduksi induk jantan yang telah diapkir dengan aplikasi manipulasi hormonal dan ablasi sebagai  kontrol.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk mengevaluasi efek injeksi hormon kombinasi salmon gonadotrophin releasing hormone analogue (sGnRH-a) dan domperidone terhadap karakteristik spermatofor induk udang windu, Penaeus monodon yang telah diapkir dari unit pembenihan tanpa ablasi tangkai mata.

## BAHAN DAN METODE

## Induk  Udang  Windu Apkir  dan  Injeksi sGnRH-a
Hewan  uji  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini adalah induk alam jantan udang windu apkiran dari hatcheri  yang  telah  dipakai  untuk  produksi  massal. Penelitian  ini  dilakukan  di  bak  berkapasitas  4  ton sebanyak tiga bak dengan kepadatan 14 ekor/bak untuk tahap ke-1 dan 12 ekor/bak pada tahap ke-2. Udang tersebut berasal dari Aceh dengan bobot rata-rata pada udang jantan yang digunakan pada percobaan pertama

## PENDAHULUAN
Pembenihan  udang  windu  pada  umumnya menggunakan  induk  alam  untuk  produksi  naupli. Pematangan gonad induk udang windu dilakukan hanya untuk  memenuhi  target  produksi  sehingga  masa pemeliharaan induk di unit instalasi pembenihan udang windu relatif singkat. Induk-induk udang windu yang digunakan  untuk  proses  pembenihan  di  Instalasi Pembenihan  Udang  Windu  (IPUW),  Balai  Riset Perikanan Budidaya Air Payau dan Penyuluhan Perikanan (BRPBAP3) pada umumnya berkisar antara 20 hingga 33 hari. Masa penggunaan induk di unit pembenihan komersil yang target produksi nauplinya lebih besar biasanya lebih lama berkisar 2-4 bulan (Nawang et al., 2014). Apabila target produksi naupli sudah tercapai, maka induk yang telah digunakan akan diapkir baik jantan  maupun  betina.  Alasan  lain  mengapa  induk betina  diapkir  adalah  performa  reproduksi  induk mengalami penurunan seiring dengan meningkatnya frekuensi  pemijahannya  yang  diindikasikan  oleh rendahnya daya tetas telur yang dihasilkan khususnya pada rematurasi (Wongprasert et al., 2006). Salah satu penyebabnya diduga adalah meningkatnya jumlah telur yang tidak fertil karena pembuahan telur yang tidak sempurna  atau  belum  terjadi  perkawinan  sehingga udang  betina  tidak  membawa  spermatofor  pada telikumnya (Lante & Laining, 2016). Selain itu, kondisi induk  betina  yang  telah  kehilangan  mata  setelah diablasi tidak memungkinkan untuk dipelihara dalam waktu yang panjang (Primavera, 1978).
Berbeda dengan induk betina, sejauh ini informasi mengenai performa induk udang windu jantan setelah proses pematangan gonad di unit pembenihan masih sangat  terbatas  baik  mengenai  berat  spermatofor maupun frekuensi rematurasinya. Namun, Lante et al. (2014)  melaporkan  bahwa  berat  spermatofor  induk jantan alam yang berasal dari perairan Polman, Sulawesi Barat  dan  tidak  diablasi  sekitar  0,05  ±  0,01  g  per kantong  (0,1  g/ekor).  Salah  satu  upaya  yang  perlu dilakukan untuk memperpanjang masa pemeliharaan induk udang windu jantan adalah melalui manipulasi hormonal tanpa ablasi mata. Aplikasi hormon sintetis telah  dilaporkan  memberikan  efek  positif  dalam memicu  pematangan  gonad  beberapa  spesis  ikan (Jamroz et al., 2008; Kagawa et al., 2013; Komatsu et al., 2006; Zadmajid, 2016) maupun krustase (Laining et al., 2015; Tinikul et al., 2014; Wongprasert et al., 2006).
dan kedua berturut-turut yakni 82-120 g dan 68-127 g. Selama penelitian udang windu diberi pakan segar empat  kali  sehari  berupa  cumi-cumi  dan  kerang Anadara granosa sebanyak 2%-2,5% bobot kering dari biomassa  induk  windu.  Bak  pemeliharaan  induk menggunakan  air  yang  difilter  dan  disterilisasikan menggunakan  kaporit  dengan  dosis  8-10  mg/L  dan disuplai dengan sistem sirkulasi (flow through).
Penelitian  ini  terdiri  atas  dua  tahap  kegiatan  di mana kegiatan pertama terdiri atas tiga perlakuan yaitu dua dosis hormon sGnRH-a dan kontrol berupa ablasi (AB).  Dua  dosis  yang  diujikan  berturut-turut  adalah 0,1 (OV-1) dan 0,2 (OV-2) mL/kg bobot udang. Hormon yang digunakan pada penelitian ini adalah salmon go- nadotropin  releasing  hormon  analog  (sGnRH-a).  Dosis yang dicobakan adalah dosis yang direkomendasikan oleh Laining et al. (2016). Aplikasi hormon dilakukan secara  injeksi  sekali  per  minggu  sebanyak  3x berdasarkan penelitian sebelumnya pada induk udang windu betina alam (Laining et al., 2015).
Dosis terbaik penyuntikan hormon sGnRH-a dari kegiatan pertama diaplikasikan lagi pada tahap kedua injeksi  yakni  0,2  mL/kg  bobot  udang  (OV-3).  Ablasi mata  (AB)  merupakan  kontrol  seperti  halnya  pada injeksi tahap pertama. Metode penyuntikan pada tahap kedua ini sama dengan yang diaplikasikan pada tahap pertama.

## Pengamatan  Perkembangan  Spermatofor
Pengamatan  tingkat  kematangan  gonad  induk jantan tidak mudah dilakukan seperti halnya pada induk betina  karena  proses  pematangan  gonadnya  tidak mudah  terlihat  dari  luar  tubuhnya.  Indikator  yang digunakan untuk mengevaluasi tingkat  kematangan gonad  (spermatofor)  induk  jantan  adalah  keluarnya spermatofor  dari  ampula  terminalis  setelah  diberi kejutan  listrik.
Pengamatan  perkembangan  spermatofor  pada kedua tahap penyuntikan dilakukan dengan metode yang sama. Seminggu setelah injeksi akhir dilakukan, induk jantan diberi kejutan listrik menggunakan arus DC dengan transformer sebesar 5 mA dan tegangan 8- 12  volt  yang  dilengkapi  dengan  elektroda  (Lante  & Laining,  2016).  Ujung  katoda  dan  anoda  elektroda ditempelkan pada bagian ventral tubuh dekat gonofor di sekitar pangkal kaki jalan kelima selama ± 2 detik untuk  mengeluarkan  spermatofor  dari  terminal ampula. Induk yang mengeluarkan spermatofor pada shok  pertama  dikategorikan  sebagai  induk  yang matang gonad (maturasi) dan sebaliknya. Apabila induk jantan yang sama mengeluarkan lagi spermatofornya pada shock elektrik ke-2 dan ke-3, maka berturut-turut induk tersebut dikategorikan melakukan rematurasi
ke-1 dan ke-2. Induk jantan mengeluarkan spermatofor dengan cara di-shock elektrik sebanyak tiga kali dengan interval satu minggu (Laining et al., 2016; Prasetyo et al., 2017).

## Kepadatan  spermatofor  dihitung  menggunakan
Haemacytometer.  Spermatofor  yang  dilepaskan  oleh induk  jantan  ditimbang  dan  dimasukkan  dalam mikrotube evendorf 1,5 mL dan digerus menggunakan tissue grinder kemudian ditambahkan larutan calcium– free  saline  solution  sebanyak  1  mL  dan  selanjutnya dihitung di bawah mikroskop pada pembesaran 40.

## Analisis  Statistik
Persentase  induk  matang  gonad  yang  ditandai dengan keluarnya spermatofor dari terminal ampula melalui  shock  elektrik  dianalisis  secara  deskriptif. Hubungan  antara  bobot  badan  dengan  bobot spermatofor udang windu (data dari percobaan tahap ke-1) dan bobot spermatofor dengan jumlah sperma- tozoa  (data  dari  percobaan  tahap  ke-2)  ditentukan dengan analisis regresi di mana dua variabel dianggap memiliki hubungan yang kuat ketika nilai r>0,5; dan sebaliknya dua variabel dianggap  lemah ketika nilai r<0,5. Analisis regresi dilakukan menggunakan aplikasi curve expert 1.4.

## HASIL DAN BAHASAN

## Performa  Induk  Jantan  Pasca  Injeksi  sGnRH-a Tahap 1
Jumlah  induk  yang  mengeluarkan  spermatofor setelah  diberikan  kejutan  listrik  fase  maturasi, rematurasi  ke-1  dan  rematurasi  ke-2  tertera  pada Tabel 1. Jumlah induk yang mengeluarkan spermatofor terbanyak  pada  fase  maturasi,  rematurasi  ke-1  dan rematurasi ke-2 terjadi pada udang yang diinjeksi 0,2 mL/kg bobot udang (OV-2) diikuti OV-1 dan AB. Hasil ini berbeda dengan yang ditemukan Laining et al. (2016) yang menyatakan penyuntikan sGnRH-a dengan dosis 0,1 mL/kg menghasilkan induk jantan (hasil budidaya) yang  melepaskan  spermatofor  setelah  diberikan kejutan listrik sebesar 80,8% lebih tinggi dibandingkan dosis 0,2 (46%) dan 0,3 (42,3%). Perbedaan tersebut diduga karena induk apkiran membutuhkan hormon gonadotropin yang lebih banyak dibandingkan induk yang  tidak  diapkir  sehingga  dosis  yang  dibutuhkan untuk perkembangan spermatofornya lebih tinggi.
Tabel  2  menyajikan  bobot  spermatofor  pada maturasi,  rematurasi  ke-1  dan  rematurasi  ke-2  dan menunjukkan bahwa  bobot spermatofor  cenderung bertambah dengan meningkatnya dosis injeksi lebih berat  yaitu  0,15  g/ekor  (maturasi);  0,126  g/ekor (rematurasi ke-1) dan 0,137 g/ekor (rematurasi ke-2)
dengan AB dan OV-1. Hal yang sama ditemukan pula pada injeksi sGnRH-a pada induk jantan udang windu hasil budidaya di mana dosis 0,2 mL/kg menghasilkan spermatofor  dengan  rerata  bobot  0,155  g/ekor dibandingkan dua dosis lainnya dan ablasi (Laining et al., 2016).

## Performa  Induk  Jantan  Pascainjeksi  sGnRH-a Tahap 2
Jumlah  induk  jantan  yang  mengeluarkan spermatofor pada fase maturasi, rematurasi ke-1 dan rematurasi ke-2 pada injeksi tahap kedua dapat dilihat pada  Tabel  3.  Jumlah  induk  yang  mengeluarkan
Tabel 1. Jumlah induk jantan yang mengeluarkan spermatofor setelah diberikan kejutan listrik pada tiga waktu pematangan gonad pada tahap pertama percobaan
Table 1. Number of male broodstock releasing spermatophore through electrical shock at three maturation times on the first trial
Tabel 2. Bobot spermatofor udang windu pada tiga siklus pematangan pada percobaan tahap pertama Table 2. Weight of spermatophore of tiger shrimp at three maturation cycles on the first trial
AB OV-1 0V-2 Ʃ jantan (ekor) Ʃ males (shrimp) 14 14 14 Rata-rata dan kisaran bobot udang jantan (g) Mean and range of body weight of male (g) 100.2 (85-110) 101.7 (84-112) 102.5 (82-120) Maturasi (Maturation ) 4 (28.6%) 5 (35.7%) 8 (57.1%) Rematurasi ke-1 (1st rematuration ) 2 (14.3%) 2 (14.3%) 5 (35.7%) Rematurasi ke-2 (2nd rematuration ) 1 (7.1%) 1 (7.1%) 3 (21.4%) Peubah
Variable Ʃ jantan yang mengeluarkan spermatofor pada tiga siklus pematangan:
Ʃ male releasing spermatophore at three maturation cycles: Dosis injeksi sGnRH-a sGnRH-a doses injection Keterangan (Note): * AB= ablasi tangkai mata; OV1= injeksi 0,1 mL/kg; OV2= injeksi 0,2 mL/kg
Keterangan (Note): * AB= ablasi tangkai mata; OV1= injeksi 0,1 mL/kg; OV2= injeksi 0,2 mL/kg
AB OV-1 0V-2 Ʃ jantan (ekor) Ʃ males (shrimp) 14 14 14 Rata-rata dan kisaran dari bobot udang jantan (g) Mean and range of body weight of male (g) 100.2 (85-110) 101.7 (84-112) 102.5 (82-120) Maturasi (Maturation ) 0.135± 0.076 (n=4) 0.13 ± 0.025 (n=5) 0.15 ± 0.019 (n=8) Rematurasi ke-1 (1st rematuration ) 0.11 ± 0.014 (n=2) 0.125 ± 0.035 (n=2) 0.126 ± 0.036 (n=5) Rematurasi ke-2 (2nd rematuration ) 0.13 ± 0 (n=1) 0.1 ± 0 (n=1) 0.137 ± 0.006 (n=3) Peubah
Variable
Bobot spermatofor pada tiga siklus pematangan (g/ekor): Weight of spermatophore at three maturation cycles  (g/shrimp):
Dosis injeksi sGnRH-a sGnRH-a doses injection
spermatofor terbanyak ditemukan pada fase maturasi di mana induk yang diinjeksi sGnRH-a 0,2 mL/kg bobot udang lebih tinggi yaitu 58,3% sedangkan pada ablasi sebanyak 50%, Sebaliknya pada rematurasi diperoleh jumlah induk yang mengeluarkan spermatofor lebih banyak  pada  AB  dibandingkan  OV-3.  Hal  ini menunjukkan  bahwa  stimulasi  pematangan spermatofor dengan injeksi sGnRH-a pada tahap kedua ini hanya berpengaruh pada fase maturasi saja. Dengan kata  lain  injeksi  sGnRH-a  hanya  menstimulasi pematangan  spermatofor  dalam  jangka  waktu  yang relatif singkat, berbeda dengan hasil yang diperoleh pada  injeksi  tahap  pertama  di  mana  efek  sGnRH-a terjadi  baik  pada  maturasi  maupun  untuk  2x rematurasi (Tabel 1).
Kondisi fisiologis induk udang jantan apkiran yang digunakan pada dua tahap injeksi ini diduga berbeda sehingga menyebabkan terjadinya perbedaan respons hormonal. Prasetyo et al. (2017) juga mengamati efek singkat dari injeksi hormon oodev pada induk jantan budidaya  di  mana  pematangan  gonad  pascainjeksi hanya  terjadi  satu  kali  siklus  saja  (maturasi)  tetapi proses  pematangan  spermatofornya  terjadi  secara simultan.  Sebaliknya  pada  rematurasi  ke-1  dan rematurasi  ke-2  udang  yang  diablasi  lebih  banyak menghasilkan spermatofor dibandingkan OV-3, diduga karena udang windu yang diablasi melakukan proses reproduksi  secara  terus-menerus  akibat  kehilangan sebagian kelenjar sinus dan x-organ yang terdapat pada tangkai  mata  yang  mensekresikan  hormon penghambat kematangan gonad (GIH) (Uawisetwathana et al., 2011; Prasetyo et al., 2017).
Bobot  spermatofor  udang  windu  pada  maturasi, rematurasi ke-1 dan rematurasi ke-2 dapat dilihat pada Tabel 4. Data yang diperoleh menunjukkan tren yang relatif sama dengan data pematangan spermatofor di mana perlakuan AB menghasilkan bobot spermatofor yang  relatif  lebih  besar  dibandingkan  pada  OV-3, kecuali pada rematurasi ke-2. Selain karena perlakuan, perbedaan  bobot  spermatofor  yang  diamati  diduga pula diakibatkan oleh perbedaan bobot induk jantan yang diinjeksi yaitu 98,2 g pada AB dan 90,7 g pada OV-3.
Kepadatan sperma udang windu untuk perlakuan ablasi untuk fase maturasi lebih padat dibandingkan ablasi  sedangkan  untuk  fase  rematurasi  ke-1  dan rematurasi ke-2 perlakuan injeksi hormon lebih padat dibandingkan ablasi. Secara umum, jumlah sel sper- matozoa  menunjukkan  penurunan  dengan meningkatnya  frekuensi  pemijahan  untuk  kedua perlakuan. Untuk lebih rinci kepadatan spermatozoa pada maturasi pertama, rematurasi ke-1 dan rematurasi ke-2 dapat dilihat pada Tabel 5.

## Hubungan  antara  Bobot Badan,  Bobot Spermatofor,  dan  Jumlah  Spermatozoa
Hasil  analisis  regresi  antara  bobot  badan  induk jantan  dengan  bobot  spermatofor  untuk  data  yang diperoleh  pada  percobaan tahap  ke-1  diilustrasikan pada Gambar 1. Hubungan antara bobot badan induk jantan  dan  bobot  spermatofor  bersifat  linier  atau bobot badan induk jantan udang windu berbanding lurus dengan bobot spermatofor dengan nilai r=0,74. Hasil  ini  menunjukkan  bahwa  induk  jantan  udang
Tabel 3. Jumlah induk jantan yang mengeluarkan spermatofor melalui kejutan listrik pada tiga waktu pematangan pada tahap kedua percobaan
Table 3. Number of male broodstock releasing spermatophore through electrical shock at three maturation times on the second trial
Keterangan (Note): * AB = ablasi tangkai mata; OV3= injeksi 0,2 mL/kg
AB OV-3
Ʃ jantan (ekor) Ʃ males (shrimp) 12 12 Rata-rata dan kisaran dari bobot udang jantan (g) Mean and range of body weight of male (g) 98.2 (73-127) 90.7 (68-115) Maturasi (Maturation ) 6 (50%) 7 (58.3%) Rematurasi ke-1 (1st rematuration ) 4 (33.3%) 3 (25%) Rematurasi ke-2 (2nd rematuration ) 6 (50%) 1 (8.3%) Peubah
Variable Ʃ jantan yang mengeluarkan spermatofor pada tiga siklus pematangan (ekor):
Ʃ male releasing spermatophore at three maturation cycles (shrimp):
Dosis injeksi sGnRH-a sGnRH-a doses injection
windu  dengan  bobot  badan  yang  lebih  besar  akan menghasilkan  bobot  spermatofor  yang  relatif  lebih besar pula. Pola ini juga dilaporkan oleh Prasetyo et al.  (2017)  di  mana  induk  udang  windu  jantan  yang berasal dari alam bobot spermatofornya berbanding positif dengan bobot badannya.
Tabel 4. Berat spermatofor udang windu pada tiga siklus pematangan pada percobaan tahap kedua
Table 4. Weight  of  spermatophore  of  tiger  shrimp  at  three  maturation  cycles  on  the second trial Tabel 5. Jumlah spermatozoa udang windu pada tiga siklus pematangan pada percobaan tahap kedua
Table 5. Number of spermatozoa of tiger shrimp at three maturation cycles on the second trial
Keterangan (Note): * AB= ablasi tangkai mata; OV3= injeksi 0,2 mL/kg
Selanjutnya hubungan antara bobot spermatofor dan  jumlah  sel  spermatozoa  untuk  data  pada percobaan tahap ke-2 digambarkan pada Gambar 2. Koefisien  regresi  yang  didapatkan  hanya  sebesar r=0,14  yang menunjukkan  bahwa hubungan  bobot spermatofor  tidak  linier  dengan  jumlah
Keterangan (Note): * AB= ablasi tangkai mata; OV3= injeksi 0,2 mL/kg
AB OV-1 Ʃ jantan (ekor) Ʃ males (shrimp) 12 12 Rata-rata dan kisaran dari bobot udang jantan (g) Mean and range of body weight of male (g) 98.2 (73-127) 90.7 (68-115) Maturasi (Maturation ) 101.2 (n=6) 89.5 (n=7) Rematurasi ke-1 (1st rematuration ) 46.68 (n=4) 81.40  (n=3) Rematurasi ke-2 (2nd rematuration ) 53.03  (n=6) 54.40 (n=1) Peubah
Variable
Jumlah spermatozoa pada tiga siklus pematangan (x10 6 sel/mL):
Number of  spermatozoa at three maturation cycles ; (x 10 6 cell/mL):
Dosis injeksi sGnRH-a sGnRH-a doses injection AB OV-3
Ʃ jantan (ekor) Ʃ males (shrimp) 12 12 Rata-rata dan kisaran bobot udang jantan (g) Mean and range of body weight of male (g) 98.2 (73-127) 90.7 (68-115) Maturasi (Maturation ) 0.086 ± 0.044 (n=6) 0.067 ± 0.014 (n=7) Rematurasi ke-1 (1st Rematuration ) 0.084 ± 0.037 (n=4) 0.08 ± 0.016 (n=3) Rematurasi ke-2 (2nd Rematuration ) 0.066 ± 0.032 (n=6) 0.066 ± 0 (n=1) Bobot spermatofor pada tiga siklus pematangan (g): Weight of spermatophore at three maturation cycles (g):
Peubah
Variable
Dosis injeksi sGnRH-a sGnRH-a doses injection
Gambar 1. Hubungan antara bobot badan dengan bobot spermatofor induk udang windu apkir (data pada percobaan tahap 1).
Figure 1. Relationship between body weight and weight of spermatophore of discarded male tiger shrimp (pooled data from the 1 st trial).
spermatozoanya. Hal ini juga ditemukan oleh Jiang et al.  (2009)  yang  menyatakan  hubungan  antara  dua variabel  ini rendah  atau  tidak  ada hubungan  antara bobot spermatofor dengan  jumlah sel spermatozoa (Meunpol et al., 2005; Prasetyo et al., 2017).

## KESIMPULAN
Induk  apkiran  jantan  udang  windu  masih  dapat memproduksi spermatofor melalui stimulasi dengan cara  ablasi  mata  dan  injeksi  hormon  sGnRH-a  pada
dosis 0,2 mL/kg bobot udang dengan tiga kali injeksi dengan interval satu minggu.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Penelitian  ini  didanai  oleh  DIPA  T.A.  2015  Balai Riset Perikanan Budidaya Air  Payau dan Penyuluhan Perikanan. Penulis mengucapkan terima kasih kepada teknisi Umar dan Ramadhan yang membantu selama penelitian. Penulis juga menyampaikan ucapan terima kasih kepada Dony Prasetyo (mahasiswa S2 IPB) yang ikut membantu pelaksanaan penelitian ini.
Gambar 2. Hubungan antara bobot spermatofor dengan jumlah spermato- zoa induk udang windu apkir (data pada percobaan tahap 2).
Figure 2. Relationship between weight of spermatophore with number of sperma- tozoa of discarded male tiger shrimp (pooled data from the 2 nd trial). y = 0.0009x - 0.0367 R² = 0.5557 0.02 0.04 0.06 0.08 0.1 70 80 90 100 110 120 130 B o b o t sp er m at o fo r Sp er m at op hor e w ei gh t (g ) Bobot badan (Body weight) (g) y = 454.08x + 63.589 R² = 0.0192 20 40 60 80 100 120 140 0.02 0.03 0.04 0.05 0.06 Ju m lah s p er m at o zo a (x 1 0 se l/m L)
N um be r of sp er m at oz oa ( x 10 ce ll/ m L)
Bobot spermatofor (Spermatophore weight) (g)

## DAFTAR  ACUAN
Cejko, B.I., Targoriska, K., Kowalski, R.K., Zarski, D., Sarosiek,  B.,  Kucharczyk,  D.,  &  Glogowski,  J. (2012).  The  effectiveness  of  hormonal  prepara- tion (Ovopel, Ovaprim, LHRHa,  hCG and CPE) in stimulating spermation in dace Leuciscus leuciscus (L.). Journal of Applied Ichthyology, 28, 873-877. Genz,  J.,  McDougall,  C.A.,  Kheeto,  S.,  Arcinas,  L.,
Burnett,  D.,  &  Anderson,  W.G.  (2014).  Induced spawning of wild-caught adult lake sturgeon: as- sessment of hormonal and stress responses, ga- mete quality and survival. Journal of applied Ichthy- ology, 30, 1565-1577.
Jamroz,  M.,  Kurcharczyk,  D.,  Hakuc-Blazowska,  A.,
Krejszeff, S., Kujawa, R., Kupren, K., Kwiatkowski, M.,  Targonska,  K.,  Zarski,  D.,  Cejko,  B.,  & Glogowski, J. (2008). Comparing the effectiveness of ovopel, ovaprim, and LHRH analogue used in the controlled reproduction of Ide, Leuciscus idus (L.). Archives of Polish Fisheries, 16(4), 363-370.
Jiang,  S.G.,  Huang,  J.H.,  Zhou,  F.L.,  Chen,  X.,  Yang, Q.B., Wen, W.G., & Ma, Z.M. (2009). Observations of reproductive development and maturation of male Penaeus monodon reared in tidal and earthen ponds. Aquaculture, 292, 121-128.
Kagawa, H., Fujie, N., Imaizumi, H., Masuda, Y., Oda, K.,  Adachi,  J.,  Nishi,  A.,  Hashimoto,  H.,  Teruya, K.,  &  Kaji,  S.  (2013).  Using  osmotic  pumps  to deliver hormones to induce sexual maturation of female  Japanese  eels,  Anguilla  japonica.  Aquacul- ture, 388-391, 30-34.
Komatsu, T., Bhandari, R.K., Kobayashi, Y., Nakamura, S.,  &  Nakamura,  M.  (2006).  GnRHa-accelerated spermatogenesis  in  the  testes  of  underyearling golden rabbitfish, Siganus guttatus (Bloch). Aquac- ulture, 257, 558-565.
Laining,  A.,  Lante,  S.,  &  Usman.  (2015).  Induksi pematangan  gonad  dan  peningkatan  tingkat pembuahan  telur  induk  udang  windu,  Penaeus monodon melalui rangsangan hormonal tanpa ablasi mata. Jurnal Riset Akuakultur, 10(1), 61-68.
Laining,  A.,  Usman,  &  Rachmansyah.  (2016).  Induc- tion of gonadal maturation of pond cultured male tiger shrimp, Penaeus monodon with different dos- ages of gonadotropin releasing hormone analogue against eye stalk ablation. Indonesian Aquaculture Journal, 11(1), 23-30.
Lante,  S.,  Laining,  A.,  &  Parenrengi,  A.  (2014).
Performa  reproduksi  udang  windu  (Penaeus monodon  Fab.)  jantan  alam  dan  domestikasi tambak. Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2014.  Pusat  Penelitian  dan  Pengembangan Perikanan Budidaya. Jakarta, hlm. 693-700.
Lante,  S.  &  Laining,  A.  (2016).  Aplikasi  inseminasi buatan pada udang windu Penaeus monodon alam menggunakan  sumber  dan  jumlah  spermatofor yang berbeda. Jurnal Riset Akuakultur, 11(3), 271- 280.
Meunpol,  O.,  Meejing,  P.,  &  Piyatiratitivorakul,  S.
(2005). Maturation diet based on fatty acid con- tent for male Penaeus monodon broodstock. Aquac- ulture Research, 36, 1216-1225.
Nawang, A., Trismawanti, I., & Parenrengi, A. (2014). Produktivitas  telur  dan  daya  tetas  induk  udang windu  (Penaeus  monodon)  asal  Aceh  dan  Takalar. Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2014. Pusat  Penelitian  dan  Pengembangan  Perikanan Budidaya. Jakarta, hlm. 701-707.
Prasetyo,  D.,  Laining,  A.,  &  Sudrajat,  O.A.  (2017).
Reproductive  performances  of  wild  male  tiger shrimp, Penaeus monodon post-injection of oocyte developer  without  eyestalk  ablation.  Jurnal Akuakultur Indonesia, 16(2), 193-204.
Primavera, J.H. (1978). Induced maturation and spawn- ing in 5 month old Penaeus monodon Fabricius by eye stalk ablation. Aquaculture, 13, 355-359.
Ramdani,  H.  (2013).  Rekayasa  hormonal  pada  udang vaname  selama  28  hari  sebagai  pengganti  teknik ablasi  mata  dalam  usaha  percepatan  pematangan gonad.  Skripsi.  Departemen  Budidaya  Perairan. Fakultas  Perikanan  dan  Ilmu  Kelautan.  Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Tinikul,  Y.,  Poljaroen,  J.,  Tinikul,  R.,  Anuracpreeda, P., Chotwiwatthanakun, C., Senin, S., Poomtong, T., Hanna, P.J., & Sobhon, P. (2014). Effect of go- nadotropin-releasing hormones and dopamine on ovarion  maturation  in  the  Pacific  white  shrimp, Litopenaeus  vannamei  and  their  presence  in  the ovary  during  ovarian  development.  Aquaculture, 420 421, 79 88.
Uawisetwathana,  U.,  Leelatanawit,  R.,  Klanchui,  A., Prommoon,  J.,  Klinbunga,  S.,  &  Karoonuthaisiri, N, (2011). Insights into eyestalk ablation mecha- nism  to  induce  ovarian  maturation  in  the  black tiger shrimp. PloS ONE, 6(9), e24427.
Wongprasert,  K.,  Asuvapongpatana,  S.,  Poltana,  P., Tiensuwan, M., & Withyachumnarnkul, B. (2006). Serotonin  stimulates  ovarian  maturation  and spawning  in  the  black  tiger  shrimp,  Penaeus monodon. Aquaculture, 261, 1447-1454.
Zadmajid,  V.  (2016).  Comparative  effect  of  human chorionic  gonadotropin  (hCG)  and  Ovaprim TM (sGnRHa  +  domperidone)  on  the  reproductive characteristics  of  wild-caught  male  Longspine craper, Capoeta trutta (Heckel, 1843). Aquaculture, 463, 7-15.