## Analisis Kualitas Air Dan Kepekatan Bioflok Pada Budidaya Polikultur Ikan Lele
(Clarias sp.) Dan Ikan Nila (Oreochromis niloticus) Sistem Bioflok
Analysis of Water Quality and Concentration of Biofloc In Policultural Catfish (Clarias sp.) and Tilapia (Oreochromis niloticus) Biofloc Systems
Andik Sudirman 1 , Sinung Rahardjo 1 , Djumbuh Rukmono 1 , Izzul Islam 2 , Adi Suriyadin 3*
1 Program Studi Pemanfaatan Sumberdaya Perikanan, Politeknik Ahli Usaha Perikanan Jakarta
2 Program Studi Bioteknologi, Fakultas Ilmu dan Teknologi Hayati, Universitas Teknologi Sumbawa
3 Program Studi Ilmu Perikanan, Fakultas Ilmu dan Teknologi Hayati, Universitas Teknologi Sumbawa
* Corresponding author : adi.suryadin@uts.ac.id

## ABSTRAK
Budidaya  secara  umum  terbagi  menjadi  dua  yaitu  monokultur  dan  polikultur. Monokultur  merupakan  sistem  pemeliharaan  ikan  secara  sendiri  atau  tunggal  pada  suatu wadah, sedangkan polikultur merupakan  kegiatan budidaya ikan dari berbagai jenis pada tingkat  trofik  yang  sama.  Sistem  budidaya  intensif  sangat  penting  untuk  meningkatkan produksi  efisiensi  waktu  dan  kuantitas  produksi,  akantetapi  menimbulkan  masalah  lain seperti penurunan kualitas air dan peningkatan kandungan bahan organik. Oleh karena itu, sangat penting untuk melakukan penelitian yang bertujuan untuk menganalisis kualitas air dan konsentrasi bioflok dalam sistem pembiakan berbasis bioflok dari polikultur yang terdiri dari lele ( Clarias sp.) dan Nila. ( Oreochromis niloticus ). Upaya ini sangat penting untuk memastikan  stabilitas  kualitas  air  di  dalam  wadah  pemeliharaan.  Rancangan  yang digunakan  yaitu  Rancangan  Acak  Lengkap  (RAL),  yaitu  4  perlakuan  dengan  3  ulangan. Skema perbandingan dari masing masing perlakuan adalah (A) 200 ekor ikan lele dengan 10 ekor ikan nila, (B) 175 ekor ikan lele dengan 15 ekor ikan nila, (C) 150 ekor ikan lele dengan 20 ekor ikan nila dan (D) 250 ekor ikan lele (kontrol). Hasil penelitian menunjukkan bahwa  kepekatan  bioflok  yang  berbeda  tidak  mempengaruhi  parameter  kualitas  air  yang terdiri dari suhu, pH dan oksigen terlarut karena ketiga parameter tersebut tetap berada pada kualitas air standar budidaya. Sedangkan konsentrasi Total Organic Matter (TOM), Total Amonia  Nitrogen  (TAN),  dan  Nitrit  (NO 2 )  sangat  berkaitan  erat  atau  berkorelasi  dengan kepekatan bioflok.
Kata Kunci: Bioflok, Clarias sp., Kualitas air, Polikultur, Oreochoromis niloticus

## ABSTRACT
Cultivation  is  generally  divided  into  two,  namely  monoculture  and  polyculture. Monoculture is a system of raising fish alone or singly in a container, while polyculture is the activity of cultivating fish of various types at the same trophic level. Intensive cultivation systems  are  very  important  for  increasing  production,  time  efficiency  and  production quantity, but they cause other problems such as decreasing water quality and increasing organic  matter  content.  Therefore,  it  is  very  important  to  carry  out  research  aimed  at analyzing water quality and biofloc concentration in a biofloc-based breeding system from polyculture  consisting  of  catfish  (Clarias  sp.)  and  Tilapia.  (Oreochromis  niloticus).  This
Jurnal Ilmu-ilmu Perikanan dan Budidaya Perairan Volume 18, Nomor 2, Desember 2023: 140-151 https://jurnal.univpgri-palembang.ac.id/index.php/ikan
effort is very important to ensure the stability of water quality in the rearing tank. The design used was Completely Randomized Design (CRD), which consisted of 4 treatments with 3 replications. The comparison scheme for each treatment is (A) 200 catfish with 10 tilapia, (B)  175  catfish  with  15  tilapia,  (C)  150  catfish  with  20  tilapia  and  (D)  250  catfish  tail (control). The results of the research show that different biofloc concentrations do not affect the water quality parameters consisting of temperature, pH and dissolved oxygen because these  three  parameters  remain  at  standard  cultivation  water  quality.  Meanwhile,  the concentration of Total Organic Matter (TOM), Total Ammonia Nitrogen (TAN), and Nitrite (NO2) is very closely related or correlated with the density of biofloc.
Keywords: Biofloc, Clarias sp., Water quality, Polyculture, Oreochoromis niloticus

## PENDAHULUAN
Budidaya  secara  umum  terbagi menjadi  dua  yaitu  monokultur  dan polikultur  (Ali et  al., 2017).  Sistem monokultur merupakan
sistem
pemeliharaan  ikan  secara  sendiri  atau tunggal  pada  suatu  wadah.  Sedangkan sistem  polikultur  merupakan  kegiatan budidaya  ikan  dari  berbagai  jenis  pada tingkat  trofik  yang  sama.  Pada  sistem polikultur  biota-biota  yang  dipelihara melakukan  kegiatan  metabolisme  yang bersinergi dengan biota lainnya pada satu wadah  yang  sama  (Mangampa  & Burhanuddin, 2014). Menurut Suharyanto (2008),  polikultur  merupakan  campuran dari  dua  spesies  biota  yang  dapat meningkatkan  nilai  produktivitas  lahan yang  digunakan  untuk  pemeliharaan sehingga  kualitas  air  dapat  terjaga.  Oleh karena  itu,  dalam  memenuhi  permintaan pasar  yang  tinggi  dan  meningkatkan produktivitas  lahan  budidaya,  penting untuk  menerapkan  budidaya  intensif dengan  padat  tebar  ikan  budidaya  dan input pakan yang tinggi.
Kegiatan  budidaya  yang  bersifat intensif  sangat  penting  dilakukan  untuk meningkatkan  produksi,  namun  dalam budidaya  secara  intensif  permasalahan utama  yang  sering  dihadapi  adalah meningkatnya kandungan bahan organik. Penumpukan  dan  pengendapan  bahan organik  didasar  kolam  budidaya  yang berasal dari sisa pakan buatan (pelet) dan feses  pada  sistem  budidaya  ikan  intensif memerlukan proses penguraian yang baik.
Jika dibiarkan, media pemeliharaan dapat mengalami  dekomposisi  anaerobik  oleh bakteri anaerob, menghasilkan gas berbahaya seperti asam sulfida, nitrit, dan amonia.  Gas-gas  ini  dapat  berdampak buruk pada proses metabolisme organisme  yang  sedang  tumbuh,  yang pada  akhirnya  menyebabkan  kematian organisme tersebut.
Untuk mengurangi akumulasi bahan organik dan mencegah pembuangannya ke periran umum, sangat penting untuk menerapkan strategi pengelolaan  kualitas  air  yang  efektif untuk  memastikan  media  pemeliharaan dalam  kondisi  yang  baik.  Salah  satu strategi  yang  diusulkan  adalah  dengan pendekatan  biologis  yang  memanfaatkan aktivitas bakteri untuk meningkatkan laju degradasi  bahan  organik.  Seiring  dengan perkembangan teknologi melalui pendekatan biologis, telah dikembangkan teknologi bioflok untuk menjaga kualitas perairan  budidaya.  Teknologi  bioflok adalah pendekatan biologis yang memanfaatkan  kemampuan  metabolisme beragam  bakteri,  yang  mencakup  bakteri heterotrof  dan  autotrof.  Teknologi  ini mengkonversi  bahan  organik  secara efisien menjadi kumpulan mikroorganisme  kohesif  yang  dikenal sebagai  flok.  Flok  ini  berfungsi  sebagai sumber  nutrisi  yang  berharga  bagi  ikan, sehingga meningkatkan efisiensi pemberian pakan dan pertumbuhan secara keseluruhan (DeSchryver et al., 2008).
Konsep  bioflok  adalah  merubah sisa limbah menjadi kumpalan dari (algae, zooplankton,  fitoplankton,  dan  bahan organik) yang kemudian membentuk flok. Sistem bioflok mewakili pendekatan yang berkembang secara kontemporer dan telah memperoleh daya tarik yang signifikan di kalangan  petani,  meskipun  pada  skala terbatas. Penerapan sistem bioflok menunjukkan beberapa keunggulan, antara lain kesesuaian dengan ketersediaan  lahan  yang  terbatas,  durasi budidaya  yang  relatif  singkat,  kebutuhan modal  yang  minimal,  ramah  lingkungan, dan  pemanfaatan  sumber  daya  air  dan pakan secara efisien. Selain itu, budidaya sistem  bioflok  juga  menunjukkan  tidak adanya  bau  tidak  sedap  pada  air  yang disebabkan
oleh aktivitas mikroorganisme  yaitu  bakteri  yang memudahkan  penguraian  limbah  yang dihasilkan selama proses budidaya (Ekasari, 2009).
Teknologi  budidaya  ikan  ramah lingkungan, khususnya ikan nila ( Oreochromis  niloticus )  dan  ikan  lele ( Clarias sp.), telah diterapkan
Kementerian  Kelautan  dan  Perikanan (KKP) melalui Direktorat Jenderal
Perikanan  Budidaya  (DJPB).  Keputusan ini didasarkan pada fakta bahwa ikan nila dan  lele  merupakan  spesies  omnivora yang mampu mencerna flok, yang terdiri dari  beragam  mikroorganisme  seperti bakteri,  alga,  zooplankton,  fitoplankton, dan  bahan  organik,  yang  berfungsi sebagai  sumber  nutrisi  penting  (Arifin, 2016).
Berdasarkan uraian diatas kualitas air  pada  media  pemeliharaan  yang  tidak baik  akan  memberikan  pengaruh  yang kurang  baik  bagi  ikan  yang  dibudidaya. Oleh  karena  itu,  sangat  penting  untuk melakukan  penelitian  yang  bertujuan untuk  menganalisis  kualitas  air  dan konsentrasi bioflok dalam sistem pembiakan berbasis bioflok dari polikultur  yang  terdiri  dari  ikan  lele ( Clarias sp.) dan ikan Nila. ( Oreochromis
niloticus ). Upaya ini sangat penting untuk memastikan  stabilitas  kualitas  air  di dalam wadah pemeliharaan.

## METODE PENELITIAN
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada bulan  Agustus  sampai  dengan  Oktober 2019.  Lokasi  penelitian  bertempat  di Laboratorium  Basah  (LABAS),  Sekolah Tinggi  Perikanan  Jakarta.  Penelitian  ini menggunakan metode eksperimen, dengan rancangan percobaan yang digunakan  adalah  Rancangan  Acak Lengkap (RAL) yaitu 4 perlakuan dengan 3  ulangan.  Volume  bak  penelitian  yang digunakan  adalah  0,5m³.  Suprapto  dan Samtafsir  (2013),  menyatakan  bahwa padat  tebar  benih  ikan  lele  yang  optimal yaitu  500-2.500  ekor/m³.  Sedangkan untuk ikan nila 100-150 ekor/m³ (Ambari, 2018)  Sehingga  perhitungan  skema perbandingan dari masing masing perlakuan adalah sebagai berikut:
A. 500 x 80% x 0,5 = 200 ekor ikan lele dan 100 x 20% x 0,5 = 10 ekor ikan nila
B. 500 x 70% x 0,5 = 175 ekor ikan lele dan 100 x 30% x 0,5 = 15 ekor ikan nila
C. 500 x 60% x 0,5 = 150 ekor ikan lele dan 100 x 40% x 0,5 = 20 ekor ikan nila
D. 500 x 100% x 0,5 = 250 ekor ikan lele (kontrol)
Persiapan awal penelitian sebelum wadah  diisi  air,  wadah  dibersihkan  dan dikeringkan atau dijemur selama 12 jam, kemudian  wadah  diisi  dengan  air  dan diberikan aerasi pada masing-masing bak penelitian. Selanjutnya setiap bak dimasukkan kapur dolomite sebanyak 200 g/m³  air,  garam  krosok  (non  iodium) 3.000  g/m³  air,  probiotik  jenis  bakteri heterotroph  ( Bacillus sp.),  gula  merah (sumber  carbon)  100  g/m³,  dan  setelah  7 hari  air  dibiarkan  maka  benih    siap ditebar.  Ukuran  benih  ikan  lele  yang digunakan dalam penelitian adalah 15-16 cm (BSN, 2000) dengan berat rata rata 30- 31  gram  berasal  dari  Cimaco  fish  farm Cikarang.  Sedangkan  ukuran  benih  ikan nila adalah 10-12 cm (BSN, 2009) dengan
berat rata rata sebesar 29-30 gram berasal dari IWAKE Cinangneng Bogor. Setelah benih  sampai  di  tempat  penelitian dilakukan  aklimatisasi  selama  30  menit, dan  kemudian  benih  dipindahkan  pada bak  penampungan  yang  telah  disiapkan sebelum ditebar pada bak penelitian.
Pengurangan dan penambahan air dilakukan selama 7 hari sekali, air diganti sebanyak  5%  dari  volume  air,  setiap  ada pengurangan air maka dilakukan penambahan  air  sesuai  dengan  air  yang terbuang,  dan  kemudian  berturut  turut dimasukkan  dolomite,  garam,  sumber carbon  dan  probiotik,  sesuai  dosis  pada persiapan  media  dengan  persentase  air yang ditambahkan.
Pellet  yang  digunakan  sebagai pakan  merupakan  pellet  yang  sesuai
dengan  kebutuhan  biota  utama  dan  telah terstandarisasi.  Pakan  yang  diberikan difermentasi  dengan  probiotik  terlebih dahulu, dengan cara diaduk dan disimpan pada  wadah  tertutup.  Feeding  rate  (FR) yang  digunakan  adalah  3%  dari  biomass ikan lele. Pakan diberikan dua kali sehari yaitu  pada  waktu  pagi  dan  sore. Pengambilan  data  kualitas  air  meliputi Kepekatan  bioflok,  Mikroba  penyusun bioflok,  Nitrit  (NO 2 ),  Ammonia  (NH 3 ), pH, Dissolved  Oxygen (DO), Total Organic  Matter (TOM)  dan  Suhu. Pengukuran
kepadatan bioflok menggunakan alat Imhoff cone, frekuensi pengambilan sampel dilakukan setiap tiga hari sekali.
Gambar 1. Pengukuran kepekatan bioflok setiap perlakuan menggunakan
tabung imhoff cone
Sedangkan pengukuran DO, Suhu dan pH dilakukan setiap dua kali sehari yaitu pagi dan  sore  dengan  menggunakan  alat Termometer,  pH  meter,  dan  DO  meter. Pengukuran  Nitrit  (NO 2 ),  Ammonia
(NH 3 ) dan TOM dilakukan setiap sepuluh hari sekali dengan menggunakan Spektrofotometer  yang  bertempat  di Laboratorium  Kimia  Sekolah  Tinggi
Perikanan Jakarta (Tabel 1). Tabel 1 . Parameter kualitas air yang diukur (suhu, pH, DO, Nitrit, Amoniak dan TOM) Parameter Satuan Metode Referensi Nitrit (NO 2 ) mg/l Spektrofotometri (BSN, 2004) Ammonia (NH 3 ) mg/l Spektrofotometri (BSN 2005) TOM mg/l Titrimetri (BSN, 2004) pH - pH meter (Suprapto dan Samtafsir, 2013) DO mg/l DO meter (Suprapto dan Samtafsir, 2013) Suhu ᵒC Termometer (Suprapto dan Samtafsir, 2013)
Data dianalisis menggunakan Analysis of Variance (ANOVA). Apabila terdapat  pengaruh  nyata  maka  akan dilakukan  uji  lanjut  dengan  uji  duncan berdasarkan tingkat kepercayaan 95%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Kualitas  air  adalah  parameter utama  yang  menentukan  kesuksesan budidaya sistem bioflok. Menurut Setijaningsih  dan  Suryaningrum  (2015), parameter kualitas air dapat memengaruhi daya dukung suatu lingkungan. Selain itu juga, Karunaarachchi (2018) menyatakan bahwa  metabolisme  organisme  budidaya sangat dipengaruhi oleh  variabel kualitas airnya, sehingga pengukuran dan analisis
kualitas  air  dalam  proses  budidaya  perlu untuk dilakukan.

## Suhu
Hasil  pengukuran  suhu  pada masing-masing perlakuan pada siang dan sore  hari  menunjukkan  tidak  adanya perbedaan yang signifikan (Tabel 2) dari semua  perlakuan.  Nilai  suhu  di  semua media  air  masing-masing  perlakuan menunjukkan  nilai  suhu  berkisar  antara 26-28  °C,  dimana  pada  pagi  hari  kisaran suhu  di  media  air  seluruh  perlakuan menunjukkan  nilai  suhu  yaitu  26  °C. Sedangkan  pada  sore  hari  suhu  pada masing-masing  perlakuan  menunjukkan nilai yang sama yaitu 28°C.
Tabel 2 . Data Suhu Air Media Pemeliharaan pada masing-masing Perlakuan
Perlakuan Suhu ( ° C) Pagi Sore A 26.53±0.18 28.39±0.00 B 26.48±0.13 28.39±0.00 C 26.49±0.18 28.40±0.03 D 26.53±0.25 28.36±0.02
Suhu  merupakan  salah  satu  faktor  yang memengaruhi  daya  dukung  lingkungan untuk  kelangsungan  hidup  bagi  ikan. Menurut Setijaningsih dan Suryaningrum (2015), level  toleransi  suhu  pada organisme air berada pada kisaran tertentu sehingga  variabilitas  suhu  pada  suatu lingkungan  merupakan  hal  yang  sangat penting.  Hasil  pengukuran  suhu  pada  air media pemeliharaan pada masing-masing perlakuan  (Tabel  2)  dapat  dikatakan
sangat layak dan optimal bagi pertumbuhan  ikan  lele  ataupun  ikan  nila dalam penelitian. Seperti yang tercatat di BSN  (2009)  dan  BSN  (2014)  suhu optimal  pertumbuhan  ikan  lele  dan  ikan nila berkisar antara 25-30°C.

## Derajat Keasaman (pH)
Pengukuran nilai pH setiap perlakuan  menunjukkan  tidak  adanya perbedaan yang signifikan (Tabel 3).
Tabel 3 . Nilai Derajat Keasaman (pH) setiap Perlakuan
Perlakuan pH Pagi Sore A 7.19±0.02 7.18±0.03 B 7.18±0.01 7.16±0.02 C 7.20±0.1 7.19±0.01 D 7.19±0.0 7.19±0.00 Hasil  pengukuran  nilai  pH  pada masing-masing  perlakuan  menunjukkan bahwa  tidak  adanya  perbedaan  yang
signifikan antara polikultur dan monokultur.  Nilai  pH  pada  masing- masing  perlakuan  cenderung  bernilai
sama dengan rentang nilai pH 7.18-7.20. Badan  Standarisasi  Nasional  (2009), menyatakan  bahwa  pH  optimal  untuk pemeliharaan ikan nila dan lele yaitu yaitu berturut  turut  sekitar  6,5-8,5  dan  6,5-8. Hasil pengukuran kandungan pH masing- masing perlakuan dapat dikatakan optimum untuk ikan lele dan ikan nila. Dissolved Oxygen (DO) Hasil  pengukuran  kadar  oksigen terlarut pada setiap perlakuan menunjukkan  tidak  adanya  perbedaan yang  signifikan,  dan  nilai  rata-rata konsentrasi oksigen terlarut >5 mg/l baik pada pagi ataupun sore hari (Tabel 4).
Tabel 4 . Konsentrasi Oksigen Terlarut (mg/l) setiap Perlakuan
Perlakuan Oksigen Terlarut (mg/L) Pagi Sore A 5.68±0.30 5.60±0.31 B 5.63±0.22 5.52±0.17 C 5.94±0.59 5.81±0.09 D 5.82±0.22 5.72±0.17
Konsentrasi  oksigen  terlarut  pada masing-masing air media pemeliharaan di setiap  perlakuan  tidak  menunjukkan adanya  perbedaan  yang  signifikan  baik polikultur  atau  pun  monokultur.  Nilai oksigen terlarut yang telah diukur berada di  kisaran  oksigen  terlarut  yang  sesuai untuk  kelangsungan  hidup  baik  ikan  lele ataupun  ikan  nila.  Oksigen  terlarut  yang sesuai untuk kelangsungan hidup ikan nila yaitu >5 mg/L, sedangkan oksigen terlarut untuk  ikan  lele  ialah  minimal  3  mg/l (BSN, 2009).
Dalam  sistem  budidaya  ikan, oksigen  terlarut  sangat  penting,  terutama dalam  sistem  intensif  (Suriyadin et  al., 2023). Jika konsentrasi oksigen di kolam budidaya ikan kurang dari 3 mg/l, hal itu berbahaya  bagi  ikan  karena  rendahnya
kadar  oksigen  dapat  mengganggu  fungsi biologis,  memperlambat  pertumbuhan, dan bahkan dapat menyebabkan kematian (Nugraha et al., 2022).

## Nitrit (NO
2 )
Pada dasarnya, kegiatan budidaya akan menghasilkan limbah berupa kotoran  ikan  serta  pakan  yang  tidak termakan  ikan  dan  tersuspensi  di  air. Limbah  tersebut akan  diurai  oleh  bakteri menjadi  senyawa  beracun  yang  disebut ammonia,  yang  kemudian  mengalami nitrifikasi menjadi nitrit yang juga bersifat beracun  (Nithiya et  al., 2016).  Hasil pengamatan menunjukkan bahwa konsentrasi  nitrit  pada  masing-masing perlakuan  menunjukkan  perbedaan  yang signifikan (Gambar 2).
Gambar 2. Konsentrasi Nitrit setiap Perlakuan
0,41± 0.01 c 0,36 ± 0.00 b 0,26± 0.02 a 0,57± 0.01 d 0,0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 A B C D Nit rit ( m g/l )
Konsentrasi  nitrit  yang  paling rendah  ditunjukkan  oleh  perlakuan  C yaitu sebesar 0,26 ± 0,02 mg/l, sedangkan konsentrasi nitrit paling tinggi ditunjukkan  oleh  perlakuan  D  yaitu sebesar  0,57  ±  0,01  mg/l  (Gambar  2). Konsentrasi  tersebut  dipengaruhi  oleh tingkat  padat  tebar  yang  berbeda,  nitrit pada  perlakuan  padat  tebar  tinggi  lebih cepat  meningkat  dibandingkan  dengan padat  tebar  rendah.  Padat  tebar  yang tinggi  dapat  meningkatkan  nilai  nitrit karena  adanya  peningkatan  produksi limbah  dari  ikan  dalam  lingkungan  yang terbatas.  Ikan  mengeluarkan  limbah berupa amonia melalui urine dan kotoran (Djaelani et al., 2022).
Menurut  Bhimantara  dan  Suryo,
(2018),  bahwa  bakteri  dalam  air  akan
mengubah  amonia  menjadi  nitrit  dalam proses  yang  disebut  nitrifikasi.  Ketika jumlah  ikan  dalam  suatu  area  padat, produksi limbah amonia juga meningkat, sehingga bakteri nitrifikasi akan menghasilkan lebih banyak nitrit, akumulasi  nitrit  yang  berlebih  dapat memengaruhi kesehatan pada ikan.

## Total Organic Matter (TOM)
TOM dalam  budidaya  ikan  dapat berasal dari berbagai sumber, seperti sisa pakan  yang  tidak  terkonsumsi,  kotoran ikan  dan  bahan  organik  lainnya  yang terbawa  ke  dalam  lingkungan  akuatik. TOM  merupakan  total  bahan  organik koloid, tersuspensi dan terlarut pada suatu perairan (Yuspita et al., 2017).
Gambar 3. Konsentrasi TOM ( Total Organic Matter ) setiap Perlakuan
Menurut  Yildiz et  al., (2006), bahwa padat tebar yang berbeda menghasilkan  limbah  budidaya  yang berbeda  pula.  Apabila  padat  tebar semakin  tinggi  maka  akumulasi  bahan organik yaitu limbah semakin tinggi.
Hasil  pengamatan  konsentrasi TOM  menunjukkan  perbedaan  yang signifikan (Gambar 3). Konsentrasi TOM yang paling tinggi terlihat pada perlakuan D  (monokultur)  yaitu  sebesar  101,38  ± 1,01  mg/l,  sehingga  mengindikasikan bahwa  kondisi  media  air  pemeliharaan pada  perlakuan  D,  tinggi  akan  bahan organik terlarut sedangkan pada perlakuan  polikultur  menunjukan  nilai TOM  yang  relative  rendah.  Dengan
demikian  dapat  dilihat  bahwa  adanya penurunan kandungan bahan organik atau TOM pada perlakuan polikultur dibanding monokultur.
Kandungan  TOM  yang  terlalu tinggi  dapat  menyebabkan  kualitas  air memburuk, salah satunya adalah terjadinya penurunan kandungan oksigen terlarut,  selain  itu  tingkat  TOM  yang tinggi  bisa  menyebabkan  stres  pada  ikan karena  kondisi  lingkungan  yang  tidak sehat (Suriyadin et al., 2023).

## Total Amonia Nitrogen (TAN)
Hasil  pengamatan  konsentrasi TAN  menunjukkan  perbedaan  yang signifikan (Gambar 4). Konsentrasi TAN
74,59 ± 1.67 a 86,84 ± 2.10 c 79,59 ± 0.55 b 101,38 ± 1.01 d 0 20 40 60 80 100 120 A B C D T OM ( m g/l ) Perlakuan
paling  tinggi  terlihat  pada  perlakuan  D yaitu sebesar 0,59 ± 0,00 mg/l sedangkan konsentrasi TAN yang paling rendah dari
semua perlakuan ditunjukkan oleh perlakuan C yaitu sebesar 0,41±0,00 mg/l.
Gambar 4. Konsentrasi TAN ( Total Amonia Nitrogen ) setiap Perlakuan
TAN merupakan representasi dari kandungan amonia (tidak terionisasi) dan amonium (terionisasi). Amonia
merupakan  jenis  senyawa  beracun  bagi organisme budidaya (Sichula et al., 2011).
Amonia  kemudian  mengalami  nitrifikasi menjadi  nitrit  dalam  keadaan  aerobik sehingga berpotensi bahaya
bagi organisme  budidaya  (Agustiyani et  al., 2007).  Menurut  Sukardi et  al., (2018)
bahwa  konsentrasi  TAN  yang  dapat ditoleransi oleh ikan secara umum yaitu di bawah  0.1  mg/l.  Sedangkan  nilai  TAN pada  seluruh  perlakuan  lebih  tinggi dibandingkan  nilai  tersebut  dan  tidak terlihat  kondisi  kurang  baik  pada  biota budidaya.  Hal  tersebut  diduga  karena biota uji yang digunakan memiliki sistem imun  lebih  baik  akibat  penambahan probiotik  serta  sistem  bioflok  yang diterapkan.  Sistem  bioflok  menjaga
kualitas  air  tetap  optimum  dengan  cara memanfaatkan  kembali  bahan  anorganik beracun menjadi gumpalan berupa bioflok yang  dapat  dimanfaatkan  ikan  sehingga ikan dapat bertahan pada media budidaya dengan konsentrasi TAN yang melebihin ambang batas toleransi.
Kepekatan Bioflok dan Mikroba Penyusun Flok
Bioflok yang terdapat pada media pemeliharaan  direpresentasikan  dengan nilai  kepekatan  bioflok.  Kepekatan bioflok  pada  masing-masing  perlakuan menunjukkan  nilai  yang  berbeda  nyata. Kepekatan  bioflok  yang  memiliki  nilai paling  tinggi  ditunjukkan  oleh  perlakuan D  atau  monokultur  yaitu  sebesar  4,37  ± 0,15  ml/l  dan  kepekatan  bioflok  yang paling rendah ditunjukkan oleh perlakuan C yaitu 2,26 ± 0,05 ml/l (Gambar 5).
Gambar 5. Kepekatan bioflok pada perlakuan polikultur berbeda : (A) 200 ekor ikan lele dan 10 ekor ikan nila, (B) 175 ekor ikan lele dan 15 ekor ikan nila, (C) 150 ekor ikan lele dan 20 ekor ikan nila, (D) 250 ekor ikan lele.
0,41±0.00 b 0,44±0.01 c 0,34±0.01 a 0,59±0.00 d 0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 0,7 A B C D T A N ( m g/) Perlakuan 3,00 ± 0.23 b 2,76 ± 0.19 ab
2,26 ± 0.05 a 4,37 ± 0.15 c 0,0 1,0 2,0 3,0 4,0 5,0 A B C D K ep ek at an B iof lok ( m l/l ) Perlakuan
Kepekatan  bioflok  terendah  pada perlakuan  C  berhubungan  erat  dengan beberapa  parameter  kualitas  air,  seperti rendahnya nilai TOM dan TAN (Gambar 3 dan Gambar 4). Selain itu, nilai tersebut dipengaruhi juga oleh rendahnya konsentrasi  amoniak  dan  nitrit  (Gambar 2).  Sedangkan  kepekatan  bioflok  yang tinggi  pada  perlakuan  D  disebabkan karena  perlakuan  D  hanya  ikan  lele (monokultur)  karena  ikan  lele  tidak sepenuhnya memanfaatkan bioflok sebagai  pakan  alami  sesuai  dengan
filosofinya bahwa ikan lele termasuk jenis ikan karnivora. Disamping itu konsentrasi nilai TOM pada perlakuan D lebih tinggi dibanding perlakuan lainnya, hal tersebut dikarenakan  jumlah  ikan  (padat  tebar) lebih  banyak  sehingga  jumlah  akumulasi bahan organiknya lebih tinggi.
Laju  akumulasi  bahan  organik, laju  konsumsi  bioflok  oleh  ikan  yang dipelihara dan laju peningkatan biomassa bakteri pada system budidaya adalah tiga faktor  kunci  yang  menentukan  nilai kepekatan bioflok (Ekasari, 2009).

## Tabel 5 . Jenis Mikroba Penyusun Flok
Perlakuan Jenis Bakteri Jenis Zooplankton A Bacillus sp., Listeria sp. Arcella sp., Vorticella sp., Wailesella sp.
B
Bacillus sp., Corynebacterium sp. Vorticella sp., Wailesella sp., Lepadella sp.
C Bacillus sp., Corynebacterium sp.
Arcella sp., Vorticella sp., Wailesella sp. D Bacillus sp. Arcella sp., Vorticella sp., Wailesella sp.
Pada  penelitian  ini  dilakukan penambahan  bakteri  probiotik  untuk menjalankan sistem bioflok. Penambahan probiotik  yaitu  berupa  bakteri  yang bersifat  heterotrof  akan  memanfaatkan ammonia  hasil  penguraian  dari  limbah budidaya menjadi  biomassa  bakteri  yang disebut bioflok. Hasil penelitian menunjukan  bahwa  mikroba  penyusun flok  terdiri  dari  bakteri  ( Bacillus sp., Listeria sp.,  dan Corynebacterium sp.), protozoa  ( Arcella sp., Vorticella sp., Wailesella sp.)  dan  rotifera  ( Lepadella sp.) (Tabel 5). Bioflok dapat tersusun dari bakteri,  protozoa  dan  rotifera  (Ekasari, 2009).
Menurut  Putri et  al., (2015),
bahwa Bacillus sp.  secara  umum merupakan bakteri yang dapat membentuk  flok.  Keberadaan  bakteri jenis  lain  selain Bacillus sp.  hasil identifikasi  mikroorganisme  pada  media bioflok  disebabkan  oleh  sistem  bioflok yang  dapat  disusun  oleh  mikroba  jenis lain  yaitu  dari  jenis  golongan  bakteri heterotrof. Bacillus sp.  merupakan  jenis
bakteri yang menghasilkan eksopolisakarida  pada  permukaan  luar tubuhnya  sehingga  berperan  sebagai tempat  pelekatan  bakteri  dan  mikroba lainnya  dalam  pembentukan  bioflok (Kasan et al., 2017).
Penerapan polikultur dengan sistem  bioflok  pada  penelitian  ini menunjukkan  bahwa  kualitas  air  media pemeliharaan  lebih  baik  dibandingkan dengan perlakuan yang hanya menggunakan  satu  jenis  ikan  (perlakuan kontrol).  Hal  tersebut  sesuai  dengan pernyataan  Sharma et  al., (2018)  bahwa sistem  polikultur  dapat  meningkatkan kualitas air dan dapat menjaga kualitas air tetap optimal.
Polikultur  yang  diterapkan  pada penelitian ini menggunakan ikan lele dan ikan  nila.  Kedua  jenis  ikan  tersebut memiliki  kebiasaan  makan  berbeda dimana  ikan  lele  diberi  makan  berupa pellet,  sedangkan  ikan  nila  yang  bersifat omnivora, mendapat asupan makanan dari sistem bioflok pada media pemeliharaan. Ikan  nila  memakan  bioflok  karena
kebiasaan makannya yang bersifat omnivora.  Menurut  Arifin  (2016),  ikan nila  terbukti  memakan  bioflok  karena ikan nila tersebut memiliki laju pertumbuhan  lebih  baik  dibandingkan ikan nila yang dipelihara pada sistem non bioflok.  Ikan  lele  merupakan  ikan karnivora  sehingga  tidak  memakan bioflok  karena  ikan  lele  tidak  memiliki aktivitas enzim amilase seperti pada ikan omnivora dan herbivora (Chaudhuri et al., 2012).

## KESIMPULAN
Hasil  penelitian  menunjukkan bahwa  kepekatan  bioflok  yang  berbeda tidak mempengaruhi parameter  pH, suhu dan  oksigen  terlarut  karena  ketiga parameter  tersebut  tetap  berada  pada rentang  optimal.  Sedangkan  konsentrasi Total  Amonia  Nitrogen (TAN), Total Organic Matter (TOM), dan Nitrit (NO 2 ) sangat  berkaitan  erat  atau  berkorelasi dengan Kepekatan Bioflok

## SARAN
Untuk  kesempurnaan  teknologi budidaya  polikultur  sistem  bioflok  ini, penulis  menyarankan  agar  kedepannya bisa  dilakukan  penelitian  lebih  lanjut terkait  kombinasi  biota  yang  lebih beragam,  agar  dapat  diketahui  seberapa efektif  teknologi  budidaya  polikultur sistem  bioflok  ini  bisa  di  terapkan  pada jenis-jenis ikan tertentu.

## UCAPAN TERIMA KASIH
Peneliti  mengungkapkan  terima kasih  kepada  Politeknik  Ahli  Usaha Perikanan  Jakarta  dan  semua  pihak  yang telah  banyak  membantu  baik  dalam bentuk dukungan maupun kritik dan saran yang membangun sehingga penelitian ini dapat terselaesaikan dengan baik.

## DAFTAR PUSTAKA
Ali,  M.S.,  Islam,  M.S.,  Begum,  N., Suravi, I.N., Mia, M., dan Kashem, M.A.  2017.  Effect  of  Monoculture
and Polyculture Systems on Growth and  Production  of  Fishes  in
Seasonal Waterbodies of <i>Haor</i>  Villages,  Sunamganj District. Journal of Scientific
Research .  Volume  9  No.3.  hal  : 307–316. Agustiyani, D., Imamuddin, H.,
Gunawan,  E.,  dan  Darusman,  L.K. 2007. Proses Nitrifikasi oleh Kultur Mikroba  Penitrifikasi  n-sw  dan Zeolite. Berita Biologi : Jurnal Ilmu Ilmu  Hayati .  Volume  8  No.5.  hal  : 405-411.
Ambari,  M.  2018.  Teknologi  Bioflok Ternyata Menguntungkan Budidaya Ikan  Nila.  https://www.mongabay. co.id/2018/04/27/teknologi-bioflok -ternyata-menguntungkan-budidaya -ikan-nila-begini-penjelasannya/
Arifin,  M.Y.  2016.  Pertumbuhan  dan Survival  Rate  Nila  ( Oreochromis sp.) Strain Merah dan Strain Hitam yang Dipelihara pada Media Bersalinitas. Jurnal Ilmiah Universitas Batanghari Jambi .
Volume 16 No.1. hal : 159-166.
Bhimantara,  G.,  dan  Suryo,  Y.  2018. Proses  Deproteinasi  Menggunakan Metode  Nitrifikasi  pada  Limbah Cair Industri Tahujurnal Envirotek. Volume 10 No.2. hal : 27-33.
[BSN]  Badan  Standarisasi  Nasional.
2000. SNI : 01-6484.3-2000.
Produksi  Induk  Ikan  Lele  Dumbo ( Clarias  gariepinus x C.fuscus ) Kelas  Induk  Pokok  ( Parent  Stock ). https://topan36.files.wordpress.com /2008/12/produksi-induk-lele- dumbo2.pdf
[BSN]  Badan  Standarisasi  Nasional.
2004.  SNI  06-6989.22-2004.  Air dan  Air  Limbah-Bagian  22  :  Cara Uji  Nilai  Permanganat  secara
Titrimetric.  http://sainstkim.teknik. ub.ac.id/wp-content/uploads/2016/ 12/SNI-06-6989.22-2004-Cara-uji- permanganat-secara-titrimetri.pdf
[BSN]  Badan  Standarisasi  Nasional.
2004.  SNI  06-6989.9-2004.  Uji Nitrit (NO 2 -N) Secara Spektrofotometri.  http://sainstkim.
teknik.ub.ac.id/wp-content/uploads /2016/12/SNI-06-6989.9-2004- Cara-Uji-Nitrit-Secara-Spektrofot ometri.pdf
[BSN]  Badan  Standarisasi  Nasional. 2005.  SNI  06-6989.30-2005.  Air
dan  Air  Limbah-Bagian  30  :  Cara
Uji Kadar Amoniak dengan Spektrofotometer secara Fenat.
http://sainstkim.teknik.ub.ac.id/wp- content/uploads/2016/12/SNI_06- 6989_1_.30-2005-Uji_Amonia_
Fenat.pdf [BSN]  Badan  Standarisasi  Nasional. 2009. SNI No.7550:2009. Produksi Benih Ikan Nila Hitam ( Oreochromis  niloticus  Bleeker )
Kelas  Benih  Sebar.  https://www.ac ademia.edu/24228298/Sni_pembes aran_nila
[BSN]  Badan  Standarisasi  Nasional. 2014.  SNI  No.6484.4:2014.  Ikan Lele Dumbo ( Clarias sp.) Bagian 4:
Produksi  Benih.  https://kkp.go.id/ an-component/media/upload-gamb ar-pendukung/DIT%20PER  BENI HAN/SNI%20Perbenihan/12SNI% 20Lele%20Dumbo%20New/6169_
SNI%206484.4%202014.pdf
Chaudhuri,  A.,  Mukherjee,  S.,  dan
Homechaudhuri,  S.  2012.  Diet Composition and Digestive Enzymes  Activity  in  Carnivorous Fishes Inhabiting Mudﬂats of Indian Sundarban Estuaries. Turkish
Journal  of  Fisheries  and  Aquatic
Sciences .  Volume  12  No.2.  hal  : 265–275.
DeSchryver,  P.,  Crab,  R.,  Defoirdt,  T., Boon, N., dan Verstraete, W. 2008. The Basics of Bioflocs Technology: The  Added  Value  for  Aquaculture.
Aquaculture . Volume 277 No.3. hal
: 125–137.
Djaelani,  M.A.,  Kasiyati.,  dan  Sunarno. 2022.  Pertumbuhan  Ikan  Nila Merah ( Oreochromis niloticus ) pada  Berbagai  Padat  Tebar  dan dengan Penambahan Aerator.
Buletin  Anatomi  dan  Fisiologi .
Volume 7 No.2. hal : 135-143.
Ekasari,  J.  2009.  Bioflocs  Technology:
Theory and Application in Intensive Aquaculture System.
Jurnal
Akuakultur  Indonesia .  Volume  8
No.2. hal : 117–126.
Karunaarachchi, K., Kumari, M., Adikari, A.  dan  Nayananjalie,  W.  2018.
Effect  of  Biofloc  on  Growth  of Genetically Improved Farmed Tilapia Juveniles in Indoor
Condition. International Journal of Fisheries  and  Aquatic  Studies . Volume 6 No.4. hal : 295–299.
Kasan, N.A, Ghazali, N.A, Ikhwanuddin, M., dan Ibrahim, Z. 2017. Isolation of  Potential  Bacteria  as  Inoculum for  Biofloc  Formation  in  Pacific Whiteleg Shrimp, Litopenaeus vannamei Culture  Ponds. Pakistan Journal  of  Biological  Sciences .
Volume 20 No.6. hal : 306–313.
Mangampa,  M.,  dan  Burhanuddin.  2014. Uji  Lapang  Teknologi  Polikultur Udang  Windu  ( Penaeus  monodon Fabr.),  Ikan  Bandeng  ( Chanos chanos Forskal)  dan  Rumput  Laut ( Gracilaria  verrucosa )  di  Tambak
Desa  Borimasunggu  Kabupaten Maros. Volume10 No.1. hal : 30-36.
Nithiya,  A.,  Rao,  P.H.,  dan  Kumar,  T.S. 2016. Bioremediation of Aquaculture Water using Nitrifying Bacteria-Microalga Consortium with Special Reference to
Ammoniacal Nitrogen. Int. J. Curr. Res. Aca. Rev . Volume 4 No.12. hal : 164–177.
Nugraha, S., Huriyah, S.B., dan Mulyani, R.  2022.  Pengaruh  Sistem  Bioflok dan  Penambahan Chlorella sp. terhadap Kualitas Air pada
Pemeliharaan  Larva  Ikan  Lele. Jurnal  Ilmu-ilmu  Perikanan  dan
Budidaya  Perairan .  Volume  17. No.1. hal : 33-41.
Putri, B., Wardiyanto, dan Supono. 2015. Efektivitas  Penggunaan  Beberapa Sumber  Bakteri  dalam  Sistem Bioflok  Terhadap  Keragaan  Ikan
Nila ( Oreochromis niloticus ).
Jurnal  Rekayasa  dan  Teknologi
Budidaya  Perairan .  Volume  4 No.1. hal : 433–438.
Setijaningsih, L., dan Suryaningrum, L.H. 2015. Pemanfaatan Limbah Budidaya Ikan Lele ( Clarias batrachus ) untuk Ikan Nila ( Oreochromis  niloticus )  dengan Sistem  Resirkulasi.  Berita  Biologi.
Volume 14 No.3. hal : 203–296.
Sharma,  A.,  Singh,  R.,  Bandhana  dan Sangotra,  R.  2018.  Comparison  of Water  Guality  and  Composition  of Bioflocs  Reared  in  Indoor  and Outdoor  Conditions. International Research  Journal  of  Biological
Sciences . Volume 7 No.11. hal : 1-
9.
Sichula, J., Makasa, M.L., Nkonde, G.K., Kefi,  A.S.,  dan  Katongo,  C.  2011. Removal of Ammonia from
Aquaculture  Water  Using  Maize Cob  Activated  Carbon. Malawi j.Aquac.Fish. Volume 1 No.2. hal :
10–15.
Suharyanto, S. 2008. Polikultur Rajungan ( Purtunus  pelagicus )  dan  Ikan Baronang  ( Siganus  gutatus )  di Tambak. Jurnal Perikanan . Volume 10 No.2. hal : 167–177.
Sukardi,  P.,  Soedibya,  P.H.T.,  dan Pramono,  T.B.  2018.  Produksi Budidaya  Ikan  Nila  ( Oreochromis niloticus )  Sistem  Bioflok  dengan Sumber Karbohidrat Berbeda. AJIE -  Asian  Journal  of  Innovation  and Entrepreneurship .  Volume  3  No.2. hal : 198-203.
Suprapto, N.S., dan Samtafsir, L.S. 2013.
Biofloc-165 Rahasia Sukses Teknologi  Budidaya  Lele.  AGRO 165. Suriyadin,  A.,  Abdurachman,  M.H., Fahruddin,  M.,  Murtawan,  H.,  dan Huda, M.A. 2023. Performa
Hematologi dan Kualitas Air Budidaya  Ikan  Patin  ( Pangasius sp.) yang diberi Bakteri Fotosintetik ( Rhodobacter sp. dan Rhodococcus sp.). Jurnal  Ilmu-ilmu  Perikanan dan Budidaya Perairan . Volume 18 No.1. hal 25-33.
Yuspita,  N.L.E.,  Putra,  I.D.N.N.,  dan Suteja,  Y.  2017.  Bahan  Organik Total  dan  Kelimpahan  Bakteri  di Perairan Teluk Benoa, Bali. J. Mar Aquat  Sci. Volume  4  No.1.  hal  : 129-140.