Jurnal Agrotek  Tropika,  Mei  2023,  Vol  11,  No.  2,  pp.  291  -  298 DOI  :  http://dx.doi.org/10.23960/jat.v11i2.6871 ISSN:  2337-4993  (Print),  2620-3138  (Online)

## PERFORMA ENTOMOPATOGEN YANG DIPEROLEH DARI PERTANAMAN JAGUNG  DI PROVINSI LAMPUNG
ENTOMOPATHOGEN PERFORMANCE OBTAINED  FROM MAIZE FIELD IN LAMPUNG PROVINCE
Puji Lestari 1* , Yuyun Fitriana 1 , Purnomo 1 , F.X. Susilo 1 , Radix Suharjo 1 , dan Reni Sulistiani 2 1 Program Studi Proteksi Tanaman, 2 Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Lampung, Bandar Lampung, Indonesia *Email: puji.lestari@fp.unila.ac.id
* Corresponding Author, Diterima: 18 Feb. 2023, Direvisi: 27 Mar. 2023, Disetujui: 11 Mei 2023

## ABSTRACT
Maize production in Lampung Province has not achieved optimal production numbers. One of the obstacles in efforts to increase production is the attack of the invasive pest S. frugiperda. This pest causes severe damage  resulting  in  reduced  yields.  To  date,  control  of  S.frugiperda  has  been  carried  out  by  applying insecticides.  However,  the  intensive  use  of  insecticides  can  lead  to  S.  frugiperda  resistance  to  certain insecticides.  Entomopathogenic  fungi  can  be  used  as  an  alternative  to  controlling  S.  frugiperda.  This study aims to determine the performance of entomopathogens obtained from maize plantations in Lampung Province. Exploration and screening were carried out by taking samples of S. frugiperda larvae infected by entomopathogens. Isolates obtained from corn plantations in Pringsewu Regency were then identified morphologically and molecularly. Furthermore, the obtained isolates from the Biotechnology Laboratory, Faculty  of  Agriculture,  University  of  Lampung,  were  tested  for  growth,  sporulation,  and  viability.  The results showed that the isolate obtained from infected larvae in Pringsewu District was Penicillium citrinum which  had  low  growth  ability  but  high  sporulation  and  viability.  Isolates  that  have  the  potential  to  be developed as control agents for S. frugiperda are isolates that have high sporulation and viability values, namely P. citrinum, T. asperellum, and A. oryzae.
Keywords : Entomopathogenic fungi, maize, Spodoptera frugiperda.

## ABSTRAK
Produksi jagung di Provinsi Lampung hingga saat ini belum mampu mencapai produksi optimum jagung. salah satu kendala dalam upaya peningkatan produksi adalah adanya serangan hama invasif Spodoptera frugiperda. Hama ini mengakibatkan kerusakan yang parah sehingga berdampak pada penurunan hasil. Pengendalian S. frugiperda hingga saat ini dilakukan dengan aplikasi insektisida. Namun penggunaan insektisida yang intensif dapat  memicu  terjadi  resistensi S.  frugiperda terhadap  insektisida  tertentu.  Jamur  entomopatogen  dapat digunakan sebagai alternatif pengendalian S. frugiperda. Penelitian ini bertjuan untuk mengetahui performa entomopatogen yang diperoleh dari pertanaman jagung di Provinsi Lampung. Eksplorasi dan skrining dilakukan dengan mengambil sampel larva S. frugiperda yang terinfeksi oleh entomopatogen. Isolat yang diperoleh dari pertanaman  jagung  di  Kabupaten  Pringsewu  kemudian  diidentifikasi  secara  morfologi  dan  molekuler. Selanjutnya, isolat diperoleh dan juga isolat koleksi Laboratorium Bioteknologi Fakultas Pertanian Universitas Lampung diuji pertumbuhan, sporulasi dan viabilitasnya.  Hasil penelitian menunjukkan bahwa isolat yang diperoleh dari larva terinfeksi di Kabupaten Pringsewu adalah Penicillium citrinum yang memiliki kemampuan tumbuh yang rendah namun sporulasi dan viabilitasnya tinggi. Isolat yang berpotensi untuk dikembangkan sebagai agensia pengendali S. frugiperda adalah isolat yang memiliki nilai sporulasi dan viabilitas yang tinggi yaitu P. citrinum, Trichoderma asperellum dan Aspergillus oryzae.
Kata kunci :  Jagung, jamur entomopatogen, Spodoptera frugiperda.

## 1.  PENDAHULUAN
Provinsi  Lampung  menjadi  salah  satu penghasil  jagung  terbesar  ketiga  setelah  Jawa Timur dan Jawa Tengah (BPS, 2017). Produksi jagung di Lampung mencapai 60 kw/ha melampaui rata-rata produksi nasional yaitu 54,75 kw/ha pada tahun  2021  (Astuti  e t  al .,  2021).  Walaupun demikian, angka produksi tersebut belum mencapai produksi  optimum  jagung  yaitu  80-100  kw/ha, sehingga  belum  mampu  mencukupi  kebutuhan pangan dan pakan dalam negeri.
Adanya  hama  baru S.  frugiperda pada tanaman jagung menyulitkan upaya peningkatan produksi jagung. Saat ini, S. frugiperda menjadi hama invasif pada tanaman jagung di Indonesia (Lubis et al ., 2020). S. frugiperda merupakan hama yang berasal dari Amerika Selatan dan dilaporkan masuk ke Afrika pada tahun 2016 (Sharanabasappa et al ., 2018). Pada tahun 2018, hama ini dilaporkan menyerang pertanaman jagung di India, Myanmar, Filipina, dan Thailand (IPPC, 2018). S. frugiperda pertama kali dilaporkan di Indonesia pada awal tahun 2019 menyerang tanaman jagung di Sumatera Barat (Nonci et  al .,  2019).  Pada  tahun  yang sama, S. frugiperda juga  dilaporkan  menyerang  tanaman jagung di Provinsi Lampung (Trisyono et al., 2019; Lestari et al ., 2020), dan Jawa Barat (Maharani et al ., 2019; Sartiami et al ., 2020).
Keberadaan S. frugiperda menjadi masalah serius bagi petani. Hal ini karena kemampuan makan  yang  tinggi  sehingga  dapat  merusak tanaman jagung dalam waktu singkat. Saat ini S. frugiperda menjadi perhatian dunia (Koffi et al .,  2020)  karena  kehilangan  hasil  yang ditimbulkan  dan  juga  dampak  terhadap perekenomian (Overton et al ., 2021). Kerusakan parah pada tanaman jagung terjadi akibat populasi hama  yang  tidak  terkendali.  Saat  ini, pengendalian S.  frugiperda dilakukan  dengan menyemprotkan insektisida yang direkomendasikan oleh kementerian pertanian. Berdasarkan hasil survei, aplikasi insektisida untuk mengendalikan S.  frugiperda dalam  satu  musim  tanam dilakukan sebanyak 4-5 kali aplikasi dan dengan dosis yang tidak sesuai dengan anjuran. Kondisi ini akan menimbulkan permasalahan baru antara lain resistensi hama terhadap jenis insektisida tertentu,  resurjensi,  dan  menurunkan  populasi musuh alami (Mudjiono, 2013). Oleh karena itu perlu dicari teknik pengendalian S. frugiperda yang ramah lingkungan, salah satunya dengan menggunakan jamur entomopatogen.
Jamur  entomopatogen dapat  menginfeksi serangga  dengan  melakukan  penetrasi  ke  dalam tubuh  serangga  inang  melalui  kulit,  saluran pencernaan, spirakel dan lubang lainnya. Penetrasi dilakukan dengan mengeluarkan enzim atau toksin. Jamur akan berkembang dalam tubuh inang dan menyerang  seluruh  jaringan  tubuh,  sehingga serangga  mati.  Hingga  saat  ini  belum  banyak ditemukan laporan mengenai jamur entomopatogen yang  efektif  sebagai  agensia  hayati  pengendali hama jagung S. frugiperda di Provinsi Lampung. Beberapa entomopatogen ditemukan menginfeksi S. frugiperda di lapang berpotensi untuk digunakan sebagai agensia pengendali hayati. Oleh karena itu, perlu diteliti performa dari entomopatogen yang diperoleh  dari  pertanaman  jagung  di  Provinsi Lampung. Penelitian ini bertujuan untuk mencari performa terbaik entomopatogen yang diperoleh dari pertanaman jagung di Provinsi Lampung.

## 2.  BAHAN  DAN  METODE

## 2.1 Tempat dan Waktu Penelitian
Pengambilan sampel dilakukan di pertanaman jagung dari berbagai daerah sentra produksi jagung di Provinsi Lampung yaitu di Kabupaten Pringsewu dan Lampung Selatan. Sampel diuji performanya di Laboratorium Bioteknologi Fakultas Pertanian Universitas Lampung. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Oktober hingga Mei 2020.

## 2.2  Pelaksanaan  Penelitian

## 2.2.1  Eksplorasi  dan  Skrining
Eksplorasi  dan  skrining  dilakukan  dengan mengambil  sampel  larva S.  frugiperda yang terinfeksi oleh entomopatogen. Sampling dilakukan di  pertanaman  jagung  di  Kabupaten  Pringsewu, Lampung Selatan, Lampung Timur dan Pesawaran. Metode pengambilan sampel yang digunakan adalah accindental  sampling.  Accidental  sampling metode pengambilan sampel berdasarkan kebetulan. Sampel  kemudian  dibawa  ke  Laboratorium Bioteknologi Pertanian, FP, Unila untuk diisolasi.

## 2.2.2  Isolasi  Jamur  Entomopatogen
Larva S.  frugiperda yang  terinfeksi  jamur entomopatogen kemudian diisolasi. Larva terinfeksi jamur  entomopatogen  dimasukkan  dalam Eppendorf  1,5  mL  yang  berisi  500  µL  larutan
Phospate  Buffer  Saline kemudian  digerus,  dan didiamkan  selama  5  menit.  Larutan  diambil sebanyak 100  µL  menggunakan  mikropipet  dan disebar  di  atas  media  PDA  kemudian  diratakan menggunakan drigalski lalu diinkubasi selama 7 hari atau hingga tumbuh jamur.

## 2.2.3  Karakterisasi  Morfologi  Jamur Entomopatogen  Hasil  Eksplorasi
Karakterisasi  dilakukan  secara  makroskopis meliputi warna koloni, bentuk koloni, tekstur koloni dan pertumbuhan koloni.  Pengamatan mikroskopis dilakukan pada hifa dan konidia antara lain, hifa bersekat  atau  tidak  bersekat,  pertumbuhan  hifa (bercabang  atau  tidak  bercabang),  warna  hifa (gelap atau hialin transparan), warna konidia (gelap atau hialin transparan), ada tidaknya konidia dan bentuk konidia (bulat, lonjong, berantai atau tidak beraturan) (Ariyanto et al. ,  2013).   Pengamatan mikroskopis  dilakukan  dengan  menggunakan mikroskop majemuk perbesaran 400x.

## 2.3  Identifikasi  dan  Molekuler  Jamur Entomopatogen  Hasil  Eksplorasi

## 2.3.1  Ekstraksi  DNA  Jamur  Entomopatogen
Sebelum  dilakukan  identifikasi,  jamur  yang telah berusia 14 hari setelah inokulasi (HSI dipanen dengan menambahkan 10 mL aquades. Pemanenan dilakukan dengan menggunakan drigalsky.  Setelah itu, hasil panen dimasukkan ke dalam tabung dan disentrifuse dengan kecepatan 14.000 rpm selama 10 menit. Setelah itu, ditambahkan 500 µl alkohol 70% lalu disentrifuse kembali dengan kecepatan dan  waktu  yang  sama  kemudian  supernatant dibuang. Pellet yang  menempel  pada  tabung sentrifuge kemudian ditambahkan buffer sebanyak 1000  µl. Pellet yang  telah  bercampur buffer kemudian ditumbuk dengan menggunakan mortar sampai halus. Kemudian diambil sebanyak 500 µl dan  ditambahkan CTAB  2%  400  µl  selanjutnya dimasukkan ke dalam tabung microcentrifuge dan diinkubasi pada suhu 65 o C selama 60 menit. Setelah itu,  ditambahkan Phenol,  chloroform, Isoamiyl alcohol (PCI)  sebanyak  500  µl  dan  disentrifuse selama 10 menit dengan kecepatan 14.000 rpm. Supernatan kemudian diambil sebanyak 600 µl dan dipindahkan ke dalam tabung baru lalu ditambahkan Chloroform Isoamiyl alcohol (CI) sebanyak 600 µl  dan  disentrifuse  selama  10  menit  dengan kecepatan  14.000  rpm.  Sebanyak  400  µl
supernatant  diambil  dan  dimasukkan  ke  dalam tabung microcentrifuge baru.  Kemudian ditambahkan isopropanol dingin  60%  sebanyak 400 µl dan diinkubasi pada suhu 20 o C selama 20 menit.  Setelah itu disentrifuse selama 10 menit dengan kecepatan 14.000 rpm.  Supernatan dibuang dan pellet diambil  dan  kemudian  ditambahkan alkohol dingin 70% sebanyak 500 µl dan disentrifuse selama  5  menit  dengan  kecepatan  14.000  rpm. Setelah  itu  supernatan  dibuang  dan pellet yang didapat  dikeringkan  selama  1  hari  kemudian ditambah 50 µl buffer TE.

## 2.3.2  Amplifikasi  dengan  PCR
DNA hasil ekstraksi diamplifikasi dengan teknik PCR  dengan  menggunakan  primer  umum  ITS-1 (5’TCC GTAGGT GAA CCT TGC GG  3’) dan ITS-4 (5’TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC 3’) (White et al., 1990).  Reaksi PCR dilakukan dengan total volume 25 µl yang terdiri dari 1,0 µl sampel DNA, 12,5 µl Green master mix, masing-masing 1,0  µl  primer  ITS-1  dan  ITS-4,  serta  air  steril sebanyak 9,5 µl.  Proses PCR dilakukan dengan tahap  inisiasi  pada  suhu  95 o C  selama  5  menit, denaturasi  pada  suhu  94-95 o C  selama  3  menit, annealing pada suhu 30-60 o C, dan ekstensi pada suhu 72 o C selama 1 menit dan final ekstensi pada suhu 72 o C selama 45 detik.  Tahapan denaturasi, annealing dan ekstensi diulang sebanyak 30 siklus.

## 2.3.3  Visualisasi  Hasil  PCR
Sebanyak 3 µl DNA hasil PCR dan dicampur dengan 1 µl loading dye , kemudian dimasukkan ke dalam sumur agar. Pada sumur yang lain dimasukkan 3 µl DNA leader . Elektroforesis dilakukan selama 60 menit dengan tegangan 50V. Hasil elektroforesis kemudian dilihat menggunakan Digi Doc .

## 2.3.4  Sekuensing  dan  Analisis  Hasil
Setelah DNA diperoleh, selanjutnya DNA isolat dikirim  ke  PT.  Genetika  Science  Jakarta  untuk dilakukan sekuensing. Hasil sekuensing kemudian dianalisis dengan menggunakan program MEGA 6 (Tamura et al ., 2013).

## 2.3.5 Uji Pertumbuhan Koloni Jamur Entomopatogen
Pengamatan  pertumbuhan  koloni  jamur entomopatogen  dilakukan  dengan  mengukur diameter koloni jamur setiap hari dari 1 HSI sampai
7 HSI. Seluruh perlakuan yang diuji diulang empat kali. Cara pengukuran diameter jamur pada cawan petri dengan membuat garis vertikal dan horizontal yang titik potong kedua garisnya tepat ditengah koloni  jamur  (Gambar  1).  Rumus  menghitung diameter koloni jamur (Syahnen et al ., 2014):
Keterangan: dl = diameter vertikal koloni jamur entomopatogen  (cm);  d2  =  diameter  horizontal koloni jamur entomopatogen (cm) ; D = diameter koloni jamur entomopatogen (cm).

## 2.3.6  Sporulasi  Jamur  Entomopatogen
Uji sporulasi dilakukan pada isolat jamur yang diperoleh dari hasil eksplorasi dan juga isolat koleksi laboratorium dengan empat ulangan. Sebanyak 25 ìL suspensi konidia jamur entomopatogen diteteskan secara perlahan pada bidang hitung haemocytometer, kemudian ditutup dengan gelas penutup. Penghitungan jumlah spora dilakukan dengan bantuan mikroskop binokuler dengan perbesaran  400x. Jumlah  spora dihitung dengan memilih 5 bidang atau kotak sedang haemocytometer, lalu setiap bidang tersebut dihitung jumlah spora pada tiap kotak kecil dan dirata-rata nilainya. Setelah  diketahui rata-rata spora pada 5 bidang pandang haemocytometer, sporulasi jamur dihitung menggunakan rumus (Syahnen et al ., 2014):
Keterangan: S = Jumlah spora (spora/mL), R = Jumlah rata-rata spora pada 5 bidang pandang haemocytometer ,  K  =  Konstanta koefisien alat (2,5 x 10 5 ) , F = Faktor Pengenceran yang dilakukan
2.3.7  Viabilitas  Spora  Jamur  Entomopatogen
Uji viabilitas jamur dilakukan dengan empat ulangan.  Sebanyak  20  ìL  suspensi  spora  jamur entomopatogen diteteskan di atas media PDA lalu diinkubasi. Semua isolat jamur diinkubasi selama 6 jam kemudian diamati di bawah mikroskop dengan perbesaran 400 x. Pengamatan dilakukan setiap 2 jam  sekali  sampai  spora  berkecambah,  dihitung banyaknya spora yang berkecambah dan yang tidak berkecambah. Spora dihitung berkecambah apabila telah terbentuk tabung kecambah yang panjangnya setengah  diameter  spora  (Rosanti et  al .,  2014). Viabilitas spora dapat dihitung menggunakan rumus sebagai berikut (Syahnen et al., 2014):

## 2.4 Analisis  Data
Uji pertumbuhan, sporulasi, dan viabilitas spora dianalisis  dengan  ragam  (ANARA).  Kemudian dilakukan pengujian pemisahan nilai tengah dengan uji Duncan’s Multiple Range Test (DMRT) pada taraf 5%.

## 3.  HASIL  DAN  PEMBAHASAN

## 3.1 Eksplorasi dan Skrining
Hasil eksplorasi, S. frugiperda yang terinfeksi oleh  jamur  hanya  ditemukan  di  Kabupaten Pringsewu. Jamur  pada larva  tersebut  kemudian diisolasi di Laboratorium Bioteknologi Pertanian, Fakultas Pertanian,  Universitas Lampung.  Isolat kemudian diidentifikasi dan diamati pertumbuhan koloni jamur, sporulasi, dan viabilitas masing-masing jamur yang diisolasi.

## 3.2  Identitas  Jamur  Entomopatogen  Hasil Eksplorasi
Hasil identifikasi secara morfologi terhadap isolat yang  diperoleh  dari  Kabupaten  Pringsewu menunjukkan  bahwa  jamur  entomopatogen  yang menginfeksi larva S. frugiperda adalah Penicillium sp. (Gambar 2). Penicillium sp. memiliki hifa yang bersekat, miselium yang umumnya tidak berwarna namun bercabang, konidiofor bersekat, konidium membentuk rantai berwarna hijau saat masih muda, kemudian  berubah  kebiruan  atau  kecoklatan (Fardiaz,  1992).  Hasil  identifikasi  molekuler menunjukkan bahwa jamur entomopatogen yang
𝐷 = 𝑑1+𝑑2 𝑑2 (1)
S = R x K x F                              (2)
𝑉𝑖𝑎𝑏𝑖𝑙𝑖𝑡𝑎𝑠 𝑆𝑝𝑜𝑟𝑎 = 𝐽𝑢𝑚𝑙𝑎 ℎ 𝑠𝑝𝑜𝑟𝑎  𝑏𝑒𝑟𝑘𝑒𝑐𝑎𝑚𝑏𝑎 ℎ 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙  𝑠𝑝𝑜𝑟𝑎  𝑦𝑎𝑛𝑔  𝑑𝑖𝑎𝑚𝑎𝑡𝑖 𝑥 100% (3)
diisolasi dari larva S. frugiperda adalah benar dari genus Penicillium. Hasil analisis sekuensing daerah ITS-1  dan  ITS-4  memperlihatkan  bahwa  isolat tersebut  masuk  ke  dalam  kelompok Penicillium citrinum (Gambar 3).

## 3.3 Pertumbuhan Koloni Jamur Entomopatogen
Pertumbuhan koloni jamur dari tujuh isolat yang diuji menunjukkan bahwa P. citrinum memiliki daya tumbuh  yang  tidak  berbeda  nyata  dengan B. bassiana dan M. flavoviride. Jamur yang memiliki pertumbuhan  tertingi  adalah T.  asperellum dan
Gambar 2. Jamur Penicillium sp.; A. Koloni isolat Penicillium sp. umur 7 HSI.; B. Jamur Penicillium sp. dilihat secara mikroskopis dengan perbesaran 400x; 1. Konidiofor, 2. Konidia, 3. Fialid.
secara statistik berbeda nyata dengan pertumbuhan isolat lainnya (Tabel 1). Selain nutrisi, jenis isolat juga sangat berpengaruh pada kecepatan tumbuh jamur.  Dari  data  tersebut  terlihat  bahwa pertumbuhan optimum dari isolat yang diuji terlihat pada 5 HSI.

## 3.4 Sporulasi Jamur  Entomopatogen
Sporulasi jamur entomopatogen dari isolat yang diuji menunjukkan bahwa isolat P. citrinum yang diperoleh dari kabupaten Pringsewu menunjukan nilai tertinggi dan berbeda nyata dengan lima isolat
Gambar 3. Dendogram hasil analisis sekuensing daerah ITS-1 dan ITS-4, Isolat yang diidentifikasi masuk ke dalam kelompok P. citrinum .
lain,  namun  tidak  berbeda  nyata  dengan T. asperellum (Tabel 2). Pada penelitian ini diketahui bahwa  pertumbuhan  jamur  tidak  berpengaruh terhadap  sporulasi. P.  citrinum memiliki  nilai sporulasi tertinggi walaupun pertumbuhan koloni jamur ini lebih rendah dibandingkan dengan isolat lain. T. asperellum memiliki daya tumbuh yang baik dan juga sporulasi yang tinggi. B. bassiana dan
Tabel 1. Pertumbuhan Diameter Koloni Jamur Entomopatogen
Keterangan: * = berbeda nyata. Angka-angka dalam satu kolom yang diikuti huruf yang sama menunjukkan nilai tidak berbeda nyata pada uji DMRT 5%.
Tabel 2. Sporulasi Jamur Entomopatogen Nama Isolat Diameter Koloni (cm) pada Hari ke- 1 hsi 2 hsi 3 hsi 4 hsi 5 hsi 6 hsi 7 hsi P. citrinum 0,12 d 0,41 d 0,58 de 0,77 de 1,13 d 1,25 de 1,31 e Trichoderma asperellum 0,85 a 5,50 a 6,00 a 6,85 a 7,86 a 7,96 a 7,98 a Aspergillus oryzae 0,51 b 1,60 b 2,06 b 2,92 b 3,57 b 4,27 b 5,40 b Talaromyces sayulitensis 0,22 c 0,85 c 1,26 c 1,78 c 2,11 c 3,05 c 4,07 c Purpureocillium lilacinum 0,20 c 0,42 d 0,65 d 1,02 d 1,15 d 1,47 d 1,76 d Beauveria bassiana 0,12 d 0,31 d 0,47 e 0,76 de 1,15 d 1,33 de 1,38 e Metarhizium flavoviride 0,08 d 0,08 e 0,45 e 0,61 e 0,90 d 1,03 e 1,11 e F Hitung 142,14*  2599,11* 2073,25*  451,48* 689,97* 443,866*  474,36* Nama isolat Sporulasi (10 7 spora/ml) P. citrinum 14,75 a T. asperellum 12,62 a A. oryzae 5,87  bc T. sayulitensis 7,25   b P. lillacinum 4,50    c B. bassiana 4,50    c M. flavoviride 4,75    c F hitung 32,03 * Nama isolat Viabilitas spora (%) P. citrinum 97,98 a T. asperellum 90,15 ab A. oryzae 97,38 a T. sayulitensis 90,23 ab P. lillacinum 99,11 a B. bassiana 84,40  b M. flavoviride 80,95  b F hitung 9,45 *
Keterangan: * = berbeda nyata. Angka-angka dalam satu kolom  yang  diikuti  huruf  yang  sama menunjukkan  nilai  tidak  berbeda  nyata pada uji DMRT 5%.

## Tabel 3. Viabilitas Spora Jamur Entomopatogen
Keterangan: * = berbeda nyata. Angka-angka dalam satu kolom  yang  diikuti  huruf  yang  sama menunjukkan  nilai  tidak  berbeda  nyata pada uji DMRT 5%.
M. flavoviride memiliki daya tumbuh dan sporulasi paling rendah disbanding dengan isolat lainnya.

## 3.5 Viabilitas Spora Jamur Entomopatogen
Hasil pengamatan menunjukkan bahwa waktu tercepat terjadinya perkecambahan spora adalah 8  jam  setelah  inokulasi  ( A.  oryzae )  dan  waktu terpanjang yang dibutuhkan adalah 18 jam setelah inokulasi ( M. flavoviride ).  Walaupun demikian. Secara  statistik  viabilitas  spora  jamur entomopatogen  menunjukkan  nilai  yang  tidak berbeda  nyata  pada  setiap  perlakuan  (Tabel  3). Pada  tabel  tersebut  diketahui  bahwa  perbedaan viabilitas spora terlihat hanya pada isolat P. citrinum yang  secara  statistik  lebih  tinggi  dibandingkan dengan isolat B.  bassiana dan M.  flavoviridae.

## 4.  KESIMPULAN
Pertumbuhan  koloni  tidak  berpengaruh terhadap  sporulasi  dan  viabilitas  jamur entomopatogen. Isolat jamur entomopatogen yang berpotensi  dikembangkan  sebagai  agensia pengendali S.  frugiperda adalah  isolat  yang memiliki nilai sporulasi dan viabilitas yang tinggi yaitu P. citrinum, T. asperellum dan A. oryzae.

## 5.  DAFTAR  PUSTAKA
Ariyanto, E.F., A.L Abadi, & Djauhari, S. 2013. Keanekaragaman Jamur Endofit pada Daun Tanaman  Padi  ( Oryza  sativa L.)  dengan Sistem Pengelolaan Hama Terpadu (PHT) dan  Konvensional  di  Desa  Bayem, Kecamatan Kasembon, Kabupaten Malang. Jurnal HPT . 1(2) : 37-51.
Astuti, K.,  O.R. Prasetyo & I.N. Khasanah. 2020.
Analisis produktivitas jagung dan kedelai di  Indonesia  2020  (Hasil  Survey Ubinan) . Badan Pusat Statistik. Jakarta. BPS  (Badan  Pusat  Statistik).  2017.  Provinsi Lampung  dalam  Angka  2017. https:// lampung.bps.go.id/publicatio  n/2017/08/ 11/9f3e06a09ebc3306f2f013c0/  provinsi- lampung-dalam-angka2017.html. Diakses pada 17 Maret 2020 Fardiaz, S. 1992. Mikrobiologi pangan. Gramedia Pustaka  Utama.  Jakarta.
Herlinda S., M.D. Utama, Y. Pujiastuti, & Suwandi.
2006.  Kerapatan  dan  Viabilitas  Spora Beauveria bassiana Akibat Subkultur dan Pengayaan  Media,  serta  Virulensinya terhadap Larva Plutella xylostella . Jurnal HPT Tropika. 6(2): 70-78.
IPPC. 2018.First Detection of Fall Armyworm on The Border of Thailand. IPPC Official Pest Report,  No  THA-03/1.  FAO:  Rome, Italy.http://www/ippc.int/. Diakses pada 20 Maret 2020
Kashket, E.R. and Z.Y. Cao. 1995. Clostridial Strain Degeneration. FEMS  Microbiology Reviews . 17: 307-315.
Koffi, D., R. Kyerematen, V.Y. Eziah, K. Agboka, M. Adom, & R.L. Meagher. 2020. Natural Enemies  of  The  Fall  Armyworm, Spodoptera  frugip erda  (JE  Smith)
(Lepidoptera: Noctuidae) in Ghana. Florida Entomology . 103 (1): 85–90.
Lestari, P., A. Budiarti, Y. Fitriana, F.X. Susilo, I.G. Swibawa, H. Sudarsono, R. Suharjo, A.M. Hariri,  Purnomo,  Nuryasin,  Solikhin,  L. Wibowo,  Jumari, &  M. Hartaman.  2020. Identification  and  Genetic  Diversity  of Spodoptera  frugiperda  in  Lampung Province, Indonesia. Biodiversitas. 21(4): 1670-1677.
Lubis, A.A.N.,  R. Anwar,  B.P.W.  Soekarno,  B. Istiaji,  D.  Sartiami,  Irmansyah,  &  D. Herawati.  2020.  Serangan  Ulat  Grayak Jagung  ( Spodoptera  Frugiperd a)  pada Tanaman Jagung di Desa Petir, Kecamatan Daramaga, Kabupatem Bogor dan Potensi Pengendaliannya Menggunakan Metarizhium Rileyi.  Jurnal  Pusat  Inovasi  Masyarakat. 2(6): 931-939.
Maharani, Y., V.K. Dewi, L.T. Puspasari, L. Rizkie, Y. Hidayat, & D. Dono. 2019. Cases of Fall Army Worm Spodoptera  frugiperda J.  E. Smith (Lepidoptera: Noctuidae) Attack on Maize  in  Bandung,  Garut  and  Sumedang
District, West Java. Jurnal Cropsaver . 2(1): 38-46.
Mudjiono, G. 2013. Pengelolaan Hama Terpadu. UB  Press. Malang.
Nonci, N., S.H. Kalqutny, H. Mirsam, A. Muis, M. Azrai, & M. Aqli. 2019. Pengenalan Fall Army  Worm ( Spodoptera  frugiperda J.E . Smith )  Hama  Baru  pada  Tanaman Jagung  di  Indonesia .  Balai  Penelitian Serealia. Maros.
Overton, K., J.L. Maino, R. Day, P.A. Umina, B. Bett, D. Carnovale, S. Ekesi, R. Meagher, &  O.L.  Reynolds.  2021.  Global  Crop Impacts, Yield Losses and Action Thresholds for  Fall  Armyworm  ( Spodoptera frugiperda ): A  Review. Crop  Protection. 45(105641): 1-15.
Paul, P. A. & G. P. Munkvold. 2005. Influence of Temperature  and  Relative  Humidity  on Sporulation  of Cercospora  zeae-maydis and Expansion of Gray Leaf Spot Lesions on  Maize  Leaves. Plant  disease .  89(6):
624-630.
Rosanti, K.T., I.R. Sastrahidayat, & A.L. Abadi. 2014.  Pengaruh  Jenis  Air  terhadap Perkecambahan Spora Jamur Colletotrichum  capsici pada  Cabai  dan Fusarium  oxysporum f . sp .  lycopersicii pada Tomat. Jurnal HPT . 2(3): 109-120. Rubio, R.G., H.C. Oliveira, J. Rivera, & N.T. Contador.
2020.  The  Fungal  Cell  Wall: Candida, Cryptococcus ,  and Aspergillus species. Frontiers in Microbiology . 10(2993): 1-13. Sartiami, D., Dadang, I.S. Harahap, Y.M Kusumah,
&  R. Anwar.  2020.  First  record  of  fall armyworm  ( Spodoptera  frugiperda )  in Indonesia  and  its  occurence  in  three provinces. IOP  Conf.  Series:  Earth  and Environmental Science . 468: 012021. Sharanabasappa,  C.M.  Kalleshwaraswamy,  R. Asokan,  H.M.  Mahadeva-Swamy,  M.S. Maruthi, H.B. Pavithra, K. Hedge, S. Navi, S.T.  Prabhu,  &  G.  Goergen.  2018.  First Report of The Fall Armyworm Spodoptera Frugiperda (JE  Smith)  (Lepidoptera: Noctuidae) an Alien Invasive Pest on Mayze in India. Pest Managemant in Horticultural Ecosystem. 24(1): 23-29.
Su, Y.Y., Y.L.  Qi,  &  L.  Cai.  2012.  Induction  of Sporlarvaion  in  Plant  Pathogenic  Fungi.
Mycology . 3(3): 195-200.
Syahnen,  D.D.N.  Sirait,  &  S.E.  Pinem.  2014. Teknik  Uji  Mutu  Agens  Pengendali
Hayati  (APH)  di  Laboratorium . Laboratorium  Lapangan  Balai  Besar Perbenihan  dan  Proteksi  Tanaman Perkebunan  (BBPPTP).  Medan.
Tamura, K., G. Stecher, D. Peterson, A. Filipski, & S. Kumar. 2013. MEGA6:Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version  6.0. Molecular Biology and Evolution 30(12): 2725–2729.
Trisyono, Y.A., V. E. B.Suputa, M. Aryuwandari, Hartaman, & Jumari. 2019. Occurrence of
Heavy  Infestation  by  the  Fall Armyworm Spodoptera  frugiperda ,  a  New  Alien Invasive Pest, in Corn in Lampung Indonesia. Jurnal  Perlindungan  Tanaman  Indonesia . 23(1): 156–160.
White, T.J., T. Bruns, S. Lee, & J. Taylor. 1990.
Amplification  and  Direct  Sequencing  of Fungal  Ribosomal  RNA  Genes  for Phylogenetics .  Academic  Press.  New York. 315-321.