## PERBANDINGAN AKTIVITAS ANTIOKSIDAN ANTARA JUS BUAH
MENGKUDU ( Morinda citrifolia ) DAN JUS RIMPANG TEMULAWAK ( Curcuma xanthorrhiza )
Bilal SA Santoso 1,4) , Sudarsono 2) , Agung E Nugroho 3) , Yosi B Murti 2)
1) Prodi Doktor Ilmu Farmasi, Fakultas Farmasi Universitas Gadjah Mada, 55281 2) Dept. Biologi Farmasi, Fakultas Farmasi Universitas Gadjah Mada, 55281
3) Dept. Farmakologi & Farmasi Klinik, Fakultas Farmasi Universitas Gadjah Mada, 55281
4) Akademi Farmasi Putra Indonesia Malang, 66126 Koresponden: bilalsas67@gmail.com

## ABSTRACT
The  purpose  of this  study was  comparisoned  antioxidant  activity  of mengkudu fruit juice  and temulawak rhizome  juice.  The  begin  of  this  study  were  made mengkudu fruit  juice  and temulawak rhizome juice by juice extractor. These juices were diluted to various concentration and determined their antioxidant activities by 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) method. The result showed that mengkudu fruit  juice  and temulawak rhizome  juice  had  antioxidant  activity.  The  IC 50 of mengkudu fruit juice was 1822,9 µg/mL stronger than the IC 50 of temulawak rhizome juice was 4797,2 µg/mL.
Keywords: antioxidant, antiradical, mengkudu fruit juice, temulawak fruit juice

## ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk membandingkan aktivitas antioksidan dari jus buah mengkudu dan  jus  rimpang  temulawak.  Penelitian  dimulai  dengan  melakukan  pembuatan  jus  buah  mengkudu dan  jus  rimpang  temulawak.  Jus  buah  mengkudu  dan  jus  rimpang  temulawak  dilarutkan  menjadi beberapa  konsentrasi  lalu  diuji  aktivitas  antioksidannya  menggunakan  metode  diphenilpikrilhidrazil (DPPH).  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  jus  buah  mengkudu  dan  jus  rimpang  temulawak mempunyai aktivitas antioksidan. Nilai IC 50 jus buah mengkudu sebesar 1822,9 µg/mL lebih kuat dari nilai IC 50 jus rimpang temulawak yang besarnya adalah 4797,2 µg/mL.
Kata Kunci : antioksidan, antiradikal, jus buah mengkudu, jus rimpang temulawak

## PENDAHULUAN
Beberapa  penyakit  seperti  kanker, jantung,  diabetes,  liver,  inflamasi  dan penyakit  degeneratif  lain  saat  ini  sudah sangat  lazim  dijumpai  di  masyarakat.  Ada berbagai  macam  teori  yang  menjelaskan penyebab  penyakit  degeneratif,  salah satunya  adalah  teori  radikal  bebas. Berdasarkan  teori  ini,  penyebab  dari penyakit degeneratif  adalah adanya proses oksidasi  radikal  bebas  dalam  mekanisme biokimia  yang  terjadi  dalam  tubuh manusia  (Devasagayam  dkk.,  2004;  Lobo dkk., 2010).
Proses  oksidasi  radikal  bebas  dapat dihambat  dengan  senyawa  antioksidan. Antioksidan  bekerja  dengan  mendonorkan elektronnya kepada molekul radikal bebas, sehingga dapat menstabilkan radikal bebas dan  menghentikan  reaksi  berantai  yang terjadi (Sies, 1997). Produksi radikal bebas dalam  tubuh  sebenarnya  bisa  diatasi  oleh reaksi  enzimatis  yang  merupakan  sistem pertahanan  dalam  tubuh  terhadap  radikal bebas.  Namun peningkatan  produksi radikal bebas akibat faktor dari luar seperti stres,  radiasi,  dan  zat  pencemar  dapat mengakibatkan  sistem  pertahanan  dalam tubuh tersebut tidak memadai lagi sehingga  untuk  melindungi  tubuh  dari serangan radikal bebas dibutuhkan tambahan  antioksidan  dari  luar  (Soare dkk.,  1997).  Antioksidan  dari  luar  dapat diperoleh dalam bentuk sintetik dan alami, namun  saat  ini  antioksidan  sintetik  mulai dibatasi  penggunaannya  akibat  adanya kekhawatiran  terhadap  efek  samping  yang mungkin dapat terjadi, sehingga antioksidan  alami  menjadi  pilihan  utama dalam  menangkal  radikal  bebas  (Sunarni dkk., 2007), oleh karena itu saat ini banyak upaya  yang  dilakukan  untuk  mencari antioksidan alami.
Tanaman  obat yang  berpotensi sebagai antioksidan alami adalah
mengkudu ( Morinda citrifolia ) dan temulawak ( Curcuma xanthorrhiza ).
Beberapa  penelitian  telah  dilakukan  pada buah  mengkudu,  salah  satunya  dilakukan oleh  Ramamoorthy  dan  Bono  yang melakukan  pengkajian  mengenai  senyawa aktif  dan  potensi antioksidan yang terkandung dalam ekstrak buah mengkudu (Ramamoorthy dan Bono, 2007), dari hasil penelitian  dikatakan  bahwa  dalam  ekstrak buah  mengkudu  terdapat  senyawa  aktif yaitu  senyawa  fenolik  dan  flavonoid  yang berpotensi sebagai antioksidan. Sedangkan Qader dkk. melakukan pengkajian mengenai  senyawa  aktif  dan  potensi antioksidan yang terkandung dalam ekstrak  rimpang  temulawak  (Qader  dkk., 2011),  dari  hasil  penelitian  tersebut dikatakan  bahwa  dalam  ekstrak  rimpang temulawak  terdapat  senyawa  aktif  yaitu senyawa  fenol  yang  berpotensi  sebagai antioksidan yang tergolong kuat.
Berdasarkan  hal  tersebut  diatas peneliti  tertarik  untuk  membandingkan aktivitas  antioksidan  dari  buah  mengkudu dan  rimpang  temulawak  dalam  bentuk yang  lebih fresh yaitu  bentuk  jus,  seperti pengolahan jamu tradisional yang terkadang  hanya  dibuat  dalam  bentuk cairan  hasil  pemerasan  buah  dan  rimpang segarnya saja.

## BAHAN DAN METODE Alat dan bahan
Bahan  utama  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  yaitu  buah  mengkudu  dan rimpang  temulawak.  Bahan  lainnya  yaitu kertas  saring,  etanol,  kloroform,  besi  (III) klorida,  serbuk  Mg,  asam  klorida,  reagen Dragendorf, reagen Wagner, reagen Meyer,  reagen  Liebermann  Burchard, gelatin  1%,  amil  alkohol  dan  DPPH.  Alat
yang digunakan dalam  penelitian ini yaitu alat-alat  gelas, juice  extractor ,  timbangan analitik, mikropipet, pipet tetes, vortex, rak tabung dan spektrofotometer UV-Vis.

## Preparasi sampel
Sampel buah mengkudu dan rimpang temulawak  diperoleh  dari  Balai  Materia Medika Batu, Kota Malang. Buah mengkudu  dicuci  bersih  dengan  air mengalir
kemudian ditiriskan.
Dimasukkan juicer  extractor kemudian dilakukan pengepresan. Hasilnya didapatkan  jus  yang  kental  dengan  ampas yang  sudah  terpisah.  Rimpang  temulawak juga  melalui  proses  yang  sama  yaitu temulawak  dicuci  bersih  dengan  air mengalir kemudian ditiriskan.
Dimasukkan juicer  extractor kemudian dilakukan pengepresan. Hasilnya didapatkan  jus  yang  kental  dengan  ampas yang sudah terpisah.

## Analisis kualitatif metabolit sekunder
Analisis
kualitatif metabolit sekunder pada sampel jus buah mengkudu (JBM)  dan  jus  rimpang  temulawak  (JRT) dilakukan  mengikuti  prosedur  Harborne (Harborne,  1996)  yang  dimodifikasi. Masing-masing  JBM  dan  JRT  diambil  1 ml kemudian dimasukkan ke dalam tabung reaksi  yang  berbeda.  Setelah  itu  masing- masing  tabung  reaksi  tersebut  ditambah dengan larutan pereaksi yang sesuai untuk dilakukan  analisis  kualitatif  kandungan metabolit sekunder.
a. Analisis kualitatif alkaloid Diambil  JBM  dan  JRT  masing-masing sebanyak  1  ml,  dimasukkan  ke  dalam masing-masing 4 tabung reaksi, ditambahkan  kloroform  sebanyak  5 tetes  pada  masing-masing  tabung. Tabung  1  sebagai  kontrol,  tabung  2 ditambahkan pereaksi Mayer jika
positif  endapan  warna  putih,  tabung  3 ditambahkan pereaksi Dragendorff terjadi  endapan  jingga,  tabung  4 ditambahkan  pereaksi  Wagner  terjadi endapan coklat.
b. Analisis kualitatif flavonoid
Diambil  1  ml  JBM  dan  1  ml  JRT, masing-masing dimasukkan dalam tabung  reaksi  yang  berbeda,  lalu masing-masing tabung reaksi ditambahkan  3  tetes  larutan  pereaksi HCL  encer  2N,  ditambahkan  sedikit serbuk  Magnesium,  ditambahkan  amil alkohol  1  ml,dikocok  ad  homogen  jika positif  larutan  warna  kuning  hingga merah.
c. Analisis kualitatif fenolik Diambil  1  ml  JBM  dan  1  ml  JRT masing-masing dimasukkan dalam tabung  reaksi  yang  berbeda,  lalu ditambahkan 2-  3 tetes larutan pereaksi FeCl 3 1%  jika hasil positif akan terjadi endapan  hitam.
d. Analisis kualitatif tanin Diambil  1  ml  JBM  dan  1  ml  JRT masing-masing dimasukkan dalam tabung  reaksi  yang  berbeda,  lalu ditambahkan  2-3  tetes  larutan  pereaksi FeCl 3 1% , ditambahkan dengan larutan pereaksi  gelatin  1%  jika  positif  akan terjadi endapan  putih.
e. Analisis kualitatif triterpenoid Diambil  1  ml  JBM  dan  1  ml  JRT masing-masing dimasukkan dalam tabung  reaksi  yang  berbeda,  lalu ditambahkan larutan pereaksi Liebermann  Burchard    pekat  sedikit demi  sedikit  melalui  dinding  tabung reaksi  jika  positif  hasil  larutan  warna merah tua.
f. Analisis kualitatif saponin Diambil  1  ml  JBM  dan  1  ml  JRT masing-masing dimasukkan dalam tabung  reaksi  yang  berbeda,  lalu
ditambahkan    aquades,  dikocok  kuat jika positif akan muncul busa.

## Uji aktivitas antioksidan dengan DPPH
Masing-masing JBM dan JRT dilarutkan  dalam  etanol  dan  dibuat beberapa konsentrasi dengan rentang 500 – 5000  µg/mL.  Masing-masing  JBM  dan JRT  dimasukkan  ke  dalam  tabung  reaksi yang  berbeda  sebanyak  1  ml,  lalu ditambahkan  1  ml  larutan  DPPH  (15  mg DPPH dilarutkan dalam etanol sampai 100 ml) dan 3 ml etanol. Kemudian diinkubasi pada  suhu  ruang  selama  30  menit  dalam ruangan  gelap  (Kasrati  dkk.,  2014;  Wang dkk.,  2015).  Diukur  absorbansinya  pada panjang  gelombang  maksimal  515  nm (hasil  optimasi)  dengan  menggunakan spektrofotometer.  Larutan  DPPH  dalam etanol digunakan sebagai kontrol (Molyneux,  2004).  Nilai  absorbansi  dari tiap  sampel  dibuat  untuk  perhitungan presentase (%) inhibisinya lalu dilanjutkan dengan  perhitungan  nilai  IC 50 dari  JBM dan JRT. Persentase aktivitas hambatan (% inhibisi)  dihitung  dengan  menggunakan rumus: (Saputro dan Sudarsono, 2015)

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil  penimbangan  buah  mengkudu sebanyak  1200  g,  kemudian  dimasukkan ke  dalam juicer  extractor menghasilkan jus  sebanyak  600  g  (ampas  pertama dimasukkan ke dalam juicer extractor lagi supaya  mendapatkan  hasil  maksimal). Rimpang  temulawak  juga  melalui  proses yang sama seperti pembuatan jus mengkudu yaitu hasil penimbangan rimpang  temulawak  sebanyak  1080  g, kemudian  dimasukkan  ke  dalam juicer extractor menghasilkan  jus  sebanyak  560 g  (ampas  pertama  dimasukkan  ke  dalam juicer  extractor lagi  supaya  mendapatkan hasil maksimal).
Analisis kualitatif metabolit sekunder Analisis kualitatif metabolit sekunder  dilakukan  untuk  mengetahui senyawa  dalam  JBM  dan  JRT.  Hasil analisis kualitatif metabolit  sekunder JBM dan  JRT  dapat  dilihat  pada  Tabel  1  di bawah ini. Tabel 1. Kandungan metabolit sekunder JBM dan JRT Jus Metabolit Sekunder Hasil Mengkudu Alkaloid + Flavonoid + Fenolik + Tanin – Saponin + Triterpenoid + Temulawak Alkaloid + Flavonoid + Fenolik + Tanin + Saponin – Triterpenoid –
Data  dalam  Tabel  1  menunjukkan bahwa  dalam  JBM  dan  JRT  mengandung beberapa  senyawa  metabolit  sekunder. JBM  mengandung  senyawa  metabolit sekunder  alkaloid,  flavonoid,  fenolik, saponin,  dan  triterpenoid  tetapi  tidak mengandung tanin sedangkan JRT mengandung  senyawa  metabolit  sekunder alkaloid,  flavonoid,  fenolik,  dan  tanin tetapi  tidak  mengandung  saponin  dan triterpenoid.  Adanya  senyawa-senyawa tersebut mengindikasikan bahwa JBM dan JRT  berpotensi  sebagai  antioksidan.  Hal tersebut didasarkan pada beberapa penelitian  sebelumnya  yang  menyatakan bahwa senyawa-senyawa
tersebut mempunyai aktivitas antioksidan. Penelitian-penelitian  tersebut  diantaranya
adalah  alkaloid  quinolon  dari  Oriza  sativa (Chung  dan  Woo,  2001)  dan  alkaloid berberine (Shirwaikar dkk., 2006)
mempunyai  aktivitas  antiradikal  terhadap DPPH,  flavonoid  yang  terkandung  di dalam tanaman berpotensi untuk digunakan  sebagai  antioksidan  (Pietta, 2000)  dan  flavonoid  yang  terkandung  di dalam tepung mempunyai aktivitas antioksidan  yang  sangat  kuat  (Chlopicka dkk.,  2012),  kandungan  senyawa  fenolik dalam  madu  yang  berasal  dari  Slovenia (Bertoncelj dkk., 2007) mempunyai aktivitas  antioksidan  yang  kuat  dan kandungan fenolik pada beberapa tanaman obat  di  Amerika  Latin  mempunyai aktivitas  antioksidan  yang  bermanfaat sebagai  antihipertensi  dan  antidiabetes (Ranilla dkk., 2010), tanin sangat berpotensi  digunakan  sebagai  antioksidan (Hagerman  dkk.,  1998)  dan  tanin  pada tanaman Eucalyptus  rostrata mempunyai aktivitas antioksidan yang dapat membantu  aktivitas  enzim  superoksid dismutase  (Okamura  dkk.,  1993),  saponin
dari  tanaman  Camelia  sinensis  memiliki aktivitas  antioksidan  dan  antiinflamasi (Sur  dkk.,  2001)  sedangkan  saponin  yang diperoleh  dari  tanaman Hedera  helix memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat (Gülçin dkk., 2004), triterpenoid yang diperoleh  dari  tanaman Olea  europaea yang diambil dari beberapa negara tenyata disamping dapat digunakan sebagai antioksidan juga sekaligus untuk antisklerosis  dan  antihipertensi  (Somova dkk., 2003) dan triterpenoid yang diperoleh dari tanaman Momordica charantia mempunyai  aktivitas  sebagai antiradikal bebas dengan efek menghambat  xantin  oksidase  (Liu  dkk., 2010).

## Uji aktivitas antioksidan dengan DPPH
Uji  aktivitas  antioksidan  pada  JBM dan  JRT  dilakukan  dengan  menggunakan metode  uji  penangkapan  radikal  bebas DPPH.  Pengujian  aktivitas  antioksidan dilakukan dalam berbagai konsentrasi (500 –  5000  µg/mL)  dengan  menggunakan larutan  DPPH  dan  dinkubasi  selama  30 menit  dalam  ruangan  gelap.  Aktivitas antioksidan  ditunjukkan  dengan  adanya perubahan  warna  ungu  dari  larutan  DPPH menjadi  warna  kuning.  Semakin  tinggi aktivitas  antioksidan  maka  warna  ungu larutan  DPPH  akan  semakin  berkurang sehingga  menyebabkan  penurunan  nilai absorbansi pada spektrofotometer (Molyneux,  2004).  Intensitas  perubahan warna yang telah diukur nilai absorbansinya  pada  panjang  gelombang maksimal  515  nm  dinyatakan  sebagai persen  hambatan  radikal  DPPH  (% inhibisi)  dimana  semakin  kecil  nilai absorbansi  sampel  maka  semakin  tinggi nilai % inhibisinya.
Gambar 1. Aktivitas antioksidan JBM
Pengujian aktivitas antioksidan JBM
pada  Gambar  1  menunjukkan  bahwa  % inhibisi  JBM  terus  meningkat  dengan meningkatnya  konsentrasi  JBM.  Nilai  %
inhibisi  setiap  konsentrasi  yang  diperoleh dari  JBM  kemudian  dibuatkan  kurva persamaan  regresi  seperti  yang  terlihat pada Gambar 2.
Gambar 2. Kurva persamaan regresi linier JBM
Persamaan  regresi  pada  Gambar  2 adalah  y  = 0,0233x + 7,0447 dengan nilai R sebesar 0,9956. Persamaan regresi linier ini kemudian digunakan untuk
menentukan  nilai  IC 50 .  Dari  perhitungan diperoleh  nilai  IC 50 dari  JBM  adalah sebesar 1822,9 µg/mL.

## Gambar 3. Aktivitas antioksidan JRT
Pengujian aktivitas  antioksidan JRT  pada  Gambar  3  menunjukkan  bahwa
%  inhibisi  JRT  juga  meningkat  dengan meningkatnya konsentrasi JRT. Nilai %
inhibisi  setiap  konsentrasi  yang  telah diperoleh  dari  JRT  kemudian  dibuatkan kurva  persamaan  regresi  seperti  yang terlihat pada Gambar 4.
Gambar 4. Kurva persamaan regresi linier JRT
Persamaan  regresi  pada  Gambar  4 adalah  y  = 0,0064x + 21,227 dengan nilai R sebesar 0.9968. Persamaan regresi linier ini kemudian digunakan untuk menentukan  nilai  IC 50 .  Dari  perhitungan diperoleh  nilai  IC 50 dari  JRT  adalah sebesar 4797,2 µg/mL.
Nilai  IC50  yang  semakin  kecil menunjukkan  bahwa  senyawa  uji  tersebut mempunyai  tingkat  keefektifan  yang lebih baik  sebagai  penangkap  radikal  bebas (Dehghan  dkk.,  2016).  Oleh  karena  itu apabila  dibandingkan  nilai  IC50  JBM dengan  JRT  maka  aktivitas  antioksidan dari  JBM  jauh  lebih  kuat  dibandingkan JRT.  Aktivitas  antioksidan  JBM  yang sangat  kuat  bila  dibandingkan  JRT mungkin  disebabkan  oleh  kandungan senyawa yang memiliki aktivitas antioksidan  dari  JBM  lebih  banyak  dari JRT.

## KESIMPULAN
Kesimpulan  penelitian  ini  adalah JBM  memiliki  aktivitas  antioksidan  yang lebih kuat bila dibandingkan dengan JRT.

## DAFTAR PUSTAKA
Bertoncelj,  J.,  Doberšek,  U.,  Jamnik,  M., dan Golob, T., 2007. Evaluation of the  phenolic  content,  antioxidant activity  and  colour  of  Slovenian
honey. Food Chemistry , 105 :  822– 828.
Chlopicka,  J.,  Pasko,  P.,  Gorinstein,  S.,
Jedryas,  A.,  dan  Zagrodzki,  P., 2012.  Total  phenolic  and  total flavonoid content, antioxidant activity  and  sensory  evaluation  of pseudocereal  breads. LWT-Food Science  and  Technology , 46 :  548– 555.
Chung,  H.S.  dan  Woo,  W.S.,  2001.  A quinolone alkaloid with antioxidant activity  from  the  aleurone  layer  of anthocyanin-pigmented rice. Journal  of  natural  products , 64 : 1579–1580.
Dehghan,  H.,  Sarrafi,  Y.,  dan  Salehi,  P.,
2016.  Antioxidant  and  antidiabetic activities  of  11  herbal  plants  from Hyrcania  region,  Iran. Journal  of Food and Drug Analysis , 24 : 179– 188.
Devasagayam,  T.P.A., Tilak, J.C., Boloor, K.K.,  Sane,  K.S.,  Ghaskadbi,  S.S., dan Lele, R.D., 2004. Free radicals and  antioxidants  in  human  health: current status and future prospects.
Japi , 52 : 794–804.
Gülçin,  İ.,  Mshvildadze,  V.,  Gepdiremen, A., dan Elias, R., 2004.
Antioxidant  activity  of  saponins isolated from  ivy:  α-hederin,
hederasaponin-C,
hederacolchiside-E and
hederacolchiside-F. Planta medica ,
70 : 561–563.
Hagerman, A.E., Riedl, K.M., Jones, G.A.,
Sovik, K.N., Ritchard, N.T., Hartzfeld,  P.W.,  dkk.,  1998.  High molecular weight plant polyphenolics (tannins) as biological  antioxidants. Journal  of Agricultural  and  Food  Chemistry , 46 : 1887–1892.
Harborne,  J.B.,  1996. Metode  Fitokimia: Penuntun Cara Modern Menganalisis  Tumbuhan ,  2nd  ed. Institut Teknologi
Bandung,
Bandung.
Kasrati,  A.,  Alaoui  Jamali,  C.,  Fadli,  M.,
Bekkouche, K., Hassani, L., Wohlmuth, H., dkk., 2014. Antioxidative activity and synergistic effect of Thymus
saturejoides  Coss.  essential  oils with  cefixime  against  selected food-borne bacteria. Industrial Crops and Products , 61 : 338–344.
Liu, C.-H., Yen, M.-H., Tsang, S.-F., Gan, K.-H.,  Hsu,  H.-Y.,  dan  Lin,  C.-N., 2010.  Antioxidant  triterpenoids from  the  stems  of  Momordica charantia. Food  chemistry , 118 : 751–756.
Lobo,  V.,  Patil,  A.,  Phatak,  A.,  dan Chandra,  N.,  2010.  Free  radicals, antioxidants  and  functional  foods: Impact on human health.
Pharmacognosy  Reviews , 4 :  118– 126.
Molyneux, P., 2004. The use of the stable free  radical  diphenylpicrylhydrazyl (DPPH)  for  estimating  antioxidant activity. Songklanakarin  J  Sci Technol , 26 : 211–219.
Okamura,  H.,  Mimura,  A.,  Yakou,  Y.,
Niwano,  M.,  dan  Takahara,  Y.,
1993.  Antioxidant activity  of tannins and flavonoids in Eucalyptus rostrata. Phytochemistry , 33 : 557–561. Pietta, P.-G., 2000. Flavonoids as antioxidants. Journal  of  natural products , 63 : 1035–1042.
Qader,  S.W.,  Abdulla,  M.A.,  Chua,  L.S.,
Najim,  N.,  Zain,  M.M.,  dan
Hamdan,  S.,  2011.  Antioxidant,
Total Phenolic
Content and Cytotoxicity Evaluation of Selected
Malaysian  Plants. Molecules , 16 : 3433–3443.
Ramamoorthy,  P.K.  dan  Bono,  A.,  2007.
Antioxidant  activity,  total  phenolic and  flavonoid  content  of  Morinda citrifolia fruit extracts from various extraction  processes. Journal  of Engineering Science and Technology , 2 : 70–80.
Ranilla, L.G., Kwon, Y.-I., Apostolidis, E., dan  Shetty,  K.,  2010.  Phenolic compounds,  antioxidant  activity and  in  vitro  inhibitory  potential against  key  enzymes  relevant  for hyperglycemia and hypertension of commonly  used  medicinal  plants, herbs and spices in  Latin America. Bioresource technology , 101 : 4676–4689.
Saputro,  A.H.  dan  Sudarsono,  S.,  2015.
Radical  Scavenging  Activity  of Milk Banana (Musa paradisiaca L.)
and Ambon Banana (Musa paradisiaca  L.)  on  Radical  2,2- Diphenyl-1-Pikril Hidrazil (DPPH). Traditional Medicine Journal , 19 : 6–13.
Shirwaikar, A., Shirwaikar, A., Rajendran, K.,  dan  Punitha,  I.S.R.,  2006.  In vitro  antioxidant  studies  on  the benzyl  tetra  isoquinoline  alkaloid berberine. Biological and
Pharmaceutical Bulletin , 29 :
1906–1910.
Sies,  H.,  1997.  Oxidative  stress:  oxidants and antioxidants. Experimental physiology , 82 : 291–295.
Soare,  J.R.,  Dinis,  T.C.,  Cunha,  A.P.,  dan
Almeida,  L.,  1997.  Antioxidant activities  of  some  extracts  of
Thymus zygis. Free radical
research , 26 : 469–478.
Somova,  L.I., Shode, F.O., Ramnanan, P.,
dan
Nadar, A., 2003. Antihypertensive, antiatherosclerotic  and  antioxidant activity  of  triterpenoids  isolated from  Olea  europaea,  subspecies
africana leaves. Journal of ethnopharmacology , 84 : 299–305.
Sunarni,  T.,  Pramono,  S.,  dan  Asmah,  R.,
2007. Flavonoid antioksidan
penangkap  radikal  dari  daun  kepel (Stelechocarpus burahol (Bl.) Hook
f.  &  Th.). Majalah  Farmasi
Indonesia , 18 : 111–116.
Sur, P., Chaudhuri, T., Vedasiromoni, J.R., Gomes,  A.,  dan  Ganguly,  D.K.,
2001. Antiinflammatory
and
antioxidant property of saponins of tea  [Camellia  sinensis  (L)  O. Kuntze]  root  extract. Phytotherapy
research , 15 : 174–176.
Wang,  S.,  Wang,  D.,  dan  Liu,  Z.,  2015.
Synergistic, additive and
antagonistic  effects  of  Potentilla fruticosa  combined  with  EGb761 on  antioxidant  capacities  and  the possible  mechanism. Industrial Crops and Products , 67 : 227–238.