IDENTIFIKASI Lactobacillus sp PADA ORANGUTAN SUMATERA ( Pongo abelii ) LIAR MENGGUNAKAN KIT API 50 CHL DI STASIUN PENELITIAN SUAQ BELIMBING ACEH SELATAN
1 Wardinal, 2 Safika dan 3 Yulia Sari Ismail 1 Program Studi Magister Biologi FMIPAUniversitas Syiah Kuala; 2 Departemen Ilmu Penyakit Hewan dan Kesehatan Masyarakat Vateriner, Fakultas Kedokteran Hewan IPB Bogor Indonesia;
3 Jurusan Biologi FMIPAUniversitas Syiah Kuala Email: wardinalbiologi@gmail.com

## ABSTRAK
Bakteri  Asam  Laktat  (BAL)  selama  ini  sudah  banyak  digunakan  sebagai  probiotik  dan  manfaat lainnya  yang  baik  bagi  kesehatan  manusia  maupun  hewan.  Genus Lactobacillus terdiri  atas  banyak spesies yang digunakan untuk fermentasi dan pengawet makanan. Dari 106 spesies Lactobacillus , 56 diantaranya  berpotensi  sebagai  probiotik.  Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengisolasi  dan mengidentifikasi  BAL  genus Lactobacillus yang  diisolasi  dari  feses  orangutan  sumatera  ( Pongo abelii )  liar    di  Stasiun  Penelitian  Suaq  Belimbing  Aceh  Selatan.  Sampel  yang  digunakan  dalam penelitian  ini  adalah  feses  orangutan  Sumatera  ( Pongo  abelii )  Liar  di  Stasiun  penelitian  Suaq Belimbing Aceh Selatan. Isolasi bakteri di lakukan menggunakan media selektif yaitu de Man Rogosa Sharpe Agar (MRSA). Koloni yang tumbuh pada media MRSA di amati morfologinya dan dilakukan pewarnaan Gram serta dilakukan uji biokimia dengan mengguanakan KIT API 50 CHL. Analisis data menggunakan  program  komputer  Apiwebᵀᴹ  Version  V-5.2.  Hasil  identifikasi  menunjukan  bahwa isolat  OUL  merupakan  spesies Lactobacillus  delbrueckii  ssp  delbrueckii, dengan  identity  93,8  %.
Berdasarkan  hal  tersebut  dapat  disimpulkan  bahwa  terdapat  BAL  pada  feses  orangutan  Sumatera ( Pongo abelii ) Liar di Stasiun penelitian Suaq Belimbing Aceh Selatan terdapat Genus Lactobacillus .
Kata Kunci: Lactobacillus , Orangutan Sumatera( Pongo abelii ), Suaq Belimbing

## ABSTRACT
Lactic Acid Bacteria (LAB) has many benefits for human and animal health and has been widely used as  a  probiotic.  One  of  the  LAB  is  the  genus  Lactobacillus  which  consists  of  many  species  used  for fermentation and food preservation. This study was conducted to isolate and identify the LAB of the genus  Lactobacillus  from  the  faeces  of  wild  Sumatran  Orangutan  ( Pongo  abelii )  at  the  Suaq Belimbing  Research  Station  in  South  Aceh.  Bacterial  isolation  was  carried  out  using  Man  Rogosa Sharpe Agar (MRSA). Colonies that grew on MRSA media were observed for morphology and were Gram  stained.  Biochemical  tests  were  conducted  using  KIT  API  50  CHL.  Data  analysis  used  the Apiweb computer program Version V-5.2. The results showed that the OUL isolate was a species of Lactobacillus  delbrueckii ssp delbrueckii ,  with  an  identity  of  93.8%.  Based  on  this,  it  can  be concluded  that  there  is  a  Lactic  Acid  Bacteria  of  the  Lactobacillus  in  the  faeces  of  wild  Sumatran
Orangutan ( Pongo abelii ) at the Suaq Belimbing Research Station in South Aceh.
Keywords: Lactobacillus , Orangutan Sumatera ( Pongo abelii ), Suaq Belimbing

## PENDAHULUAN
akteri  asam  laktat  (BAL)  telah  lama dikenal  sebagai  kelompok  bakteri  yang menguntungkan. Pemanfaatannya sangat luas  baik  untuk  pangan  maupun  pakan.  Bakteri Asam  Laktat  terdiri  dari  genus Lactobacillus, Lactococcus , Leuconostoc , Streptococcus , Enterococcus , Pediococcus , Melissococcus , Carnobacterium , Oenococcus , Tetragenococcus , Vagococcus dan Weissella yang  memiliki morfologi,  pH,  suhu  optimum,  toleransi  garam, habitat  serta  potensi  patogenitas  yang  berbeda [1]. Lactobacillus merupakan  genus  terbesar dalam kelompok BAL dengan hampir 80 spesies berbeda.  Jenis  Lactobacillus  dapat  dibedakan atas dua kelompok yaitu bersifat homofermentatif  dan  heterofermentatif.  Spesies
Jurnal Biotik, ISSN: 2337-9812, Vol. 7, No. 1, Ed. April 2019, Hal. 49-56

## Wardinal, dkk
bakteri yang tergolong homofermentatif misalnya L. bulgaricus, L. lactis , L. acidophilus , dan L.  thermophilus ,  sedangkan  spesies  bakteri yang  tergolong  heterofermentatif  adalah L. fermentum [2]. Sejak  sekitar  tahun  1989,  BAL  mulai populer  dipakai  sebagai  probiotik.  Pemilihan bakteri  asam  laktat  sebagai  probiotik  sangat berkaitan  dengan  sifatnya  yang  memenuhi kriteria  aman  untuk  dikonsumsi generally recognized  as  safe (GRAS),  dimana  hal  ini merupakan syarat utama untuk probiotik [3] dan kemampuannya  untuk  menghasilkan  zat  yang dapat mempengaruhi pertumbuhan mikroorganisme  lain.  Probiotik  didefinisikan sebagai  mikroorganisme  hidup,  jika  konsumsi dalam  jumlah  tertentu,  memberikan  manfaat kesehatan di samping nutrisi dasar lainya [4].
Selama  ini  BAL  sudah  banyak  digunakan sebagai probiotik dan manfaat lainnya yang baik bagi  kesehatan  manusia  maupun  hewan,  namun untuk orangutan belum banyak. Penelitian BAL pada  orangutan  telah  dilakukan,  namun  hanya pada  orangutan  yang  terdapat  pada  kebun binatang,  tempat  penangkaran  atau  cagar  alam. Hasil  penelitian  terhadap  orangutan  Kalimantan ( Pongo  pygmaeus )  di  Taman  Safari  Indonesia ditemukan  5,9x10 7 koloni  bakteri  asam  laktat [5], sedangkan pada orangutan Sumatera ( Pongo abelii) terdapat  7,2x10 6 koloni  BAL,  dengan ciri-ciri  bakteri  Gram  positif, cocus dan basil [6]. Karakterisasi BAL pada orangutan sumetera yang ada di kebun binatang bukit tinggi dengan Gen  16S  rRNA  juga  telah  dilakukan  oleh  Hajar et  al (2016)  ;  hasil  penelitian  ini  menunjukan bahwa  BAL  pada  orangutan  Sumatera  memiliki karakter  yang  dekat  dengan  BAL  strain Lactobacillus  helveticus strain  IMAU50151 dengan  tingkat  homologi  89%  [7].  Hasil penelitian  Septiarini et  al. (2011)    bahwa  BAL dari  feses  orangutan  ( Pongo  pygmaeus )  mampu menghambat bakteri enteropatogen ( Escherichia coli,  Salmonella, dan Shigella )  karena  memiliki aktivitas antimikroba [8]. Orangutan  merupakan  satu-satunya  kera besar  yang  hidup  di  Asia,  sedangkan  tiga kerabatnya,  yaitu  gorila,  simpanse,  dan  bonobo hidup di Afrika. Namun saat ini jenis kera besar itu  sekitar  90%  berada  di  Indonesia  dan  hanya ditemukan  di  Pulau  Sumatera  dan  Kalimantan. Para ahli primata sepakat untuk menggolongkan
orangutan  yang  hidup  di  Pulau  Sumatera  ke dalam  spesies Pongo  abelii dan  spesies Pongo pygmaeus yang  menempati  hutan-hutan  dataran rendah  di  Kalimantan  [9].  Penelitian  yang dilakukan  oleh  terhadap  orangutan  sumatera yang terisolasi di Tapanuli, dengan membandingkan  cranio-mandibular    dan  gigi dari  orangutan  yang  terlibat  konplik  dengan manusia  sebanyak  33  individu  didapatkan perbedaan  yang  kosisten  antara  orangutan tapanuli  dengan Pongo  abelii dan Pongo pigmeus .  Analisis  genom  juga  dilakukan terhadap  37  sampel  genom  orangutan  dengan model jarak evolusi mengungkapkan bahwa ada perbedaan antara orangutan tapanuli dengan dua spesies  orangutan  lainya.  Berdasarkan  analisis cranio-mandibular  dan  genom  maka  orangutan diklasifikasikan  menjadi  tiga  spesies.  Spesies baru  diberi  nama Pongo  tapanuliensis yang populasinya  terdapat  di  Batang  Toru  dengan jumlah  individu  yang  hidup  lebih  kurang  800 individu [10].
Menurut  Rijksen  &  Meijaard  (1999), Singleton  dkk.  (2004)  dan  Wich  dkk.  (2008), populasi  orangutan  pada  saat  ini  mengalami penurunan  yang  signifikan.  Perkiraan  jumlah individu  orangutan  Sumatera  ( Pongo  abelii ) sekitar 13.846 individu pada tahun 2016. Jumlah populasi  orangutan  Kalimantan  ( P.  pygmaeus ) diperkirakan sekitar 54.000 individu pada tahun 2008  dan  untuk  jenis  anak P.  pygmaeus diperkirakan  tinggal  3.000-4.500  individu. Penurunan  jumlah  populasi  yang  besar  ini menyebabkan  orangutan  dimasukkan  ke  dalam satwa yang dilindungi, bahkan sejak tahun 2000 IUCN Red  List  of  Threatened  Species telah memasukkan  orangutan  Kalimantan  ke  dalam kelompok  satwa Endangered dan  orangutan Sumatera ke dalam kategori Criticaly Endangered [14].
Gangguan  saluran  pencernaan  merupakan masalah  yang  paling  sering  ditemukan  pada satwa  primata.  Hasil  identifikasi  terhadap  9 sampel  feses  orangutan  sumatera  ditemukan bakteri  genus Salmonella dan Shigella dari  dua ekor  orangutan.  Satu  ekor  teridentifikasi Salmonella ,  satu  ekor  teridentifikasi Shigella , sedangkan sampel lainnya teridentifikasi bakteri coliform sehingga  dapat  disimpulkan  bahwa orangutan  yang  berada  di  Pusat  Pelepasliaran Orangutan,  Jantho terinfeksi bakteri Salmonella
Identifikasi Lactobacillus sp pada Orangutan Sumatera ( Pongo abelii ) Liar Menggunakan KIT API 50 CHL…
dan Shigella [15].
BAL  pada  orangutan  liar  kemungkinan besar  juga  bisa  digunakan  sebagai  salah  satu probiotik yang menjaga keseimbangan ekosistem usus dan dapat menekan pertumbuhan bakteri enteropatogen agar tidak menjadi wabah penyakit ketika pelepasan liar kembali orangutan  ke  alam  bebas.  Jenis-jenis  BAL  pada orangutan liar dapat dijadikan sebagai indikator/parameter untuk pelepasan liar orangutan.  Penelitian  identifikasi  BAL  pada orangutan sumatera  liar yang ada di alam bebas belum  pernah  dilakukan.  Oleh  karena  itu penelitian  ini  dilakukan  untuk  mengisolasi  dan mengidentifikasi BAL genus Lactobacillus yang diisolasi  dari  feses  orangutan  sumatera  ( Pongo abelii )  liar    di  Stasiun  Penelitian  Suaq Belimbing Aceh Selatan.

## METODE PENELITIAN
Sampel  feses  orangutan  Sumatera  ( Pongo abelii )  liar  diambil  di  stasiun  penelitan  Suaq
Belimbing  Taman  Nasional  Gunung  Leuser yang  terletak  di  kabupaten  Aceh  Selatan. Sampel  feses  diambil  secara  aseptis  dan dimasukkan  ke  dalam  plastik/botol  steril,  lalu disimpan  dalam cool  box dan  dibawa  ke laboratorium  untuk  dianalisis.  Sampel  feses yang  telah  dikoleksi  dilakukan  pengenceran secara  berseri  10 -1 –  10 -6 menggunakan  pepton water  steril.  Hasil  pengenceran  sebanyak  1  ml ditanam  menggunakan  metode pour  plate pada media selektif MRSA steril.

## Isolasi Bakteri Asam Laktat
Isolasi  bakteri  dilakukan  sesuai  dengan Standar  Nasional  Indonesia  (SNI)  ISO  68871:
2012.  Sampel  feses  yang  telah  dikoleksi dilakukan  pengenceran  secara  berseri  ditanam menggunakan  metode pour  plate pada  media selektif  MRS  agar  (MRSA)  steril,  yang  masih
cair  (±50°C)  ke  dalam  cawan  petri,  cawan  petri diputar secara perlahan-lahan di atas meja untuk mengaduk campuran media agar dengan sampel pengenceran, selanjutnya cawan petri diinkubasi ke dalam inkubator dengan suhu 37°C selama 24 jam. Koloni yang tumbuh dilakukan pengamatan morfologi  koloni  berdasarkan  bentuk  ( circular, irregular,  spindle,  filamentous,  rhizoid ),  tepian ( entire,  lobate,  undulate,  serrate  felamentous,
curled )  elevasi  ( flat,  raised,  convex,  umbonate )
dan warna koloni.

## Pewarnaan Gram
Pewamaan Gram dimulai dengan membersihkan gelas objek dengan menggunakan  alkohol  96%.  Kemudian  diambil 1  tetes  akuades  dan  diletakkan  di  atas  gelas objek  selanjutnya  diambil  koloni  yang  tumbuh terpisah pada media MRSA dengan menggunakan ose. Koloni dihomogenkan dengan  akuades  di  atas  gelas  objek  dan  fiksasi. Kemudian  preparat  tersebut  diberi  pewarna kristal  vioiet  selama  1  menit.  Setelah  itu, preparat  ditetesi  lugol  dibiarkan  1  menit  dan dicuci  dengan  etanol  selama  20  detik.  Preparat ditetesi  dengan  safranin  dan  dibiarkan  selama  1 menit.  Selanjutnya,  preparat  dicuci  dengan  air mengalir  dan  dikeringkan  dengan  cara  diangin- anginkan.  Setelah  kering,  preparat  ditetesi dengan  minyak  emersi  dan  diperiksa  di  bawah mikroskop dongan pembesaran 1000x [16].
Uji Fermentasi Kit API 50 CHL Uji fermentasi dilakukan dengan menggunakan  kit  API  50  CHL  (API  Bio Merieux  Perancis).  Media  API  50  CHL merupakan  media  siap  pakai  yang  mengandung 49  macam  karbohidrat.  Pengamatan  atas  dasar uji  dilakukan  berdasarkan  kemampuan  isolat bakteri  asam  laktat  untuk  memfermentasikan atau bereaksi dengan karbohidrat yang digunakan.  Sel  isolat  BAL  diperoleh  melalui sentrifugasi  kemudian  dibuat  suspensinya  pada media  suspensi.  Masing-masing  karbohidrat pada  API  50  CHL  diinokulasikan  dengan suspensi  isolat  bakteri  yang  diuji.  Inkubasi dilakukan  selama  48  jam  pada  suhu  37°C  [17]. Terjadinya    perubahan  warna  dari  warna  biru menjadi  hijau  hingga  kuning  atau  hitam dinyatakan sebagai uji positif.

## Analisis Data
Koloni  LAB  yang  yang  berhasil  diisolasi di  lanjutkan  identifikasi    dengan  pewarnaan Gram, dan uji fermentasi menggunakan Kit API 50  CHL  ( API  Bio  Merieux  Perancis ).  Analisis data  dilakukan  dengan  menggunalan  program komputer Apiwebᵀᴹ Version V5.2untuk mengidentifikasi spesies.

## HASIL DAN PEMBAHASAN Isolasi Bakteri Asam Laktat (BAL)
Isolasi  bakteri  merupakan  sebuah  teknik untuk mendapatkan koloni tunggal suatu bakteri. Sampel  feses  orangutan  sumatera  diambil  dari satu ekor orangutan dalam satu kali pengambilan di  Stasiun  Penelitian  Suaq  Belimbing.    Isolasi BAL  asal  feses  orangutan  Sumatera    pada  liar
dilakukan  sesuai  dengan  Standar  Nasional Indonesia  (SNI)  ISO  68871:  2012.  Koloni  yang tumbuh  merata  pada  media  setelah  diinkubasi selama  24  jam  hanya  pada  pengenceran  10 4 − dan  10 5 − yang  koloninya  tumbuh  terpisah, sedangkan pada pengenceran yang lain pertumbuhan bakteri sangat padat dan memenuhi  semua  permukaan  media.  Koloni yang  tumbuh  pada  media  MRS  agar  dapat dilihat pada Gambar 1. Gambar  1.  Koloni  BAL  yang  tumbuh  pada media  MRSA,  A=      pengenceran 10 -4 , B= pengenceran 10 -5
Proses  isolasi  dilakukan  dengan  teknik goresan.Kultur  tumbuh  terpisah  diinokulasikan pada media agar MRS dengan metode gores dan diinkubasi  pada  inkubator  dengan  suhu  37  ºC selama  24  jam.  Koloni  BAL  tunggal  yang tumbuh  dimurnikan  kembali  dengan  cara menginokulasikan  kembali  koloni  ke  dalam media  MRS  Agar  secara  goresan,  kemudian diinkubasi kembali pada inkubator. Hasil  isolasi  didapatkan  koloni  BAL  yang tumbuh secara terpisah/tunggal. Tahap selanjutnya  dilakukan  dentifikasi  makrokopis dengan  mengamati  langsung  morfologi  koloni yang  meliputi  bentuk  ( circular,  irregular, spindle,  filamentous,  rhizoid ),  tepian  ( entire, lobate,  undulate,  serrate  felamentous,  curled ), elevasi  ( flat,  raised,  convex,  umbonate ),  dan
warna.  Hasil  identifikasi  makroskopis  dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Identifikasi Isolat secara Makroskopik No Isolat Morfologi Bentuk  Tepian  Elevasi  Warna 1  OUL Bulat Rata  Cembung  Krem Media  agar  MRS  yang  bersifat  selektif, yang menghambat pertumbuhan bakteri lain dan mendukung  pertumbuhan  BAL.  Dari  hasil identifikasi secara makrokopis didapatkan koloni  BAL  dengan  bentuk  bulat,  tepian  rata, elevasi  cembungdan  berwarna  krem.  Hal  ini sesuai  dengan  hasil  penelitian  Sya’baniar (2017)yang  melakukan  isolasi  BAL  genus Lactobacillus yang diisolasi dari feses orangutan sumatera  ( Pongo  abelii )  di  Kebun  Binatang
Kasang  Kulim  Bangkinang  Riau,  dengan  hasil identifikasi  secara  makrokopi  mendapat  koloni dengan  bentuk  bulat,  tepian  rata,  elevasi cembung serta berwarna krem [18].

## Pewarnaan Gram
Identifikasi  mikroskopis  dilakukan dengan cara  pengamatan  langsung  di  bawah  mikroskop untuk  mengamati  morfologi  dari  sel  BAL.
Identifikasi  BAL  secara  mikroskopis  dilakukan dengan menggunakan pewarnaan Gram. Pewarnaan  Gram  digunakan  untuk  mengetahui morfologi  sel  bakteri  serta  untuk  membedakan bakteri  Gram  positif  (warna  ungu)  dan  Gram negatif  (warna  merah).  Perbedaan  warna disebabkan  oleh  perbedaan  komposisi  dinding sel.  Menurut  Campbel et  al. (2008)  bakteri Gram  positif  memiliki  dinding  sel  yang  lebih sederhana  dengan  jumlah  peptidoglikan  yang relatif  banyak,  sedangkan  bakteri  Gram  negatif memiliki  peptidoglikan  yang  lebih  sedikit  dan lebih komplek secara struktural, dengan membran luar yang mengandung lipopolisakarida  (karbohidrat  yang  berikatan dengan  lipid)  [19].  Hasil  pewarnaan  Gram  bisa dilihat pada Gambar 2. Berdasarkan hasil pewarnaan Gram terhadap  isolat  yang  sudah  identifikasi  secara makrokopis  didapatkan  sel  yang  berbentuk batang ( basil ) dan berwana ungu. Hal ini sesuai dengan  ciri  BAL  yang  merupakan  kelompok bakteri  Gram  positif  yang  disatukan  oleh
Identifikasi Lactobacillus sp pada Orangutan Sumatera ( Pongo abelii ) Liar Menggunakan KIT API 50 CHL…
karakteristik morfologi, metabolik, dan fisiologis tertentu. Secara umum BAL merupakan  kelompok  Gram  positif,  tidak memiliki spora, dengan bentuk coccus dan basil
yang  menghasilkan  asam  laktat  sebagai  produk utama  selama  fermentasi  karbohidrat  [20]. Tahap  selanjutnya  dilakukan  uji  biokimia dengan    menggunakan  KIT  API  50  CHL  untuk menentukan  spesies  dan  genus  dari  BAL  yang sudah  diidentifikasi  secara  makroskopis  dan mikroskopis.
Gambar  2.  Hasil  Pewarnaan  Gram  BAL

## Orangutan liar

## Uji Fermentasi Kit API 50 CHL
API 50 CHL
digunakan untuk
mengidentifikasi  genus  BAL  hingga  ke  tingkat spesies.  Kit  API  testtersusun  atas  49 tube yang terdiri dari 49 jenis gula yang akan difermentasi oleh  isolat  uji.  Fermentasi  ditandai  dengan perubahan  warna  indikator  bromkresol  ungu menjadi  hijau  kekuningan  hingga  kuning,
kecuali  jenis  gula  nomor  25  ( Esculin  ferric citrate) fermentasi  ditandai  dengan  perubahan
warna menjadi hitam. ( apiweb.biomerieux.com ).
Hasil  fermentasi  isolat  BAL  OUL  dapat  dilihat pada Gambar 3. Hasil  uji  memperlihatkan  bahwa  isolat BAL OUL asal orangutan liar dapat memfermentasi  10  jenis  gula,  diantaranya D- Ribose, D-Glucose, D-Fructose, N-Acetyl Glucosamine,  Esculin  ferric  citrate,  D-Maltose, D-Melibiose,  D-Sacharose,  D-Trehalose dan Gentiobiose .  Salminen  (2004)  menyatakan bahwa  kemampuan  BAL  untuk  melakukan fermentasi gula merupakan salah satu karakteristik  penting  untuk  identifikasi  genus BAL[20]. Winarno et al. (2003) juga menjelaskan  bahwa  sifat  terpenting  dari  bakteri asam  laktat  adalah  kemampuannya  untuk memfermentasi gula menjadi asam laktat [21].
Gambar 3. Hasil fermentasi Kit API 50 CHL
Hasil identifikasi menggunakan API WEB
software V5.2.  menunjukkan isolat OUL adalah Lactobacillus delbrueckii ssp delbrueckii dengan kemiripan 93,8%  dapat dilihat pada Tabel 2. Tabel 2. Hasil Identifikasi  KIT API 50 CHL No  Isolat Identifikasi Identity(%) 1  OUL Lactobacillus  delbrueckii ssp delbrueckii 93,8 %
Hasil  identifikasi  menunjukkan  bahwa isolat    OUL  termasuk  ke  dalam  kelompok homofermentatif.  Holzapfel  (2014)  menyatakan bahwa  genus Lactobacillus sebahagian  bersifat homofermentatif dan sebahagiannya lagi bersifat hetereofermentatif, namun Lactobacillus

## Wardinal, dkk
delbrueckii  ssp  delbrueckii dan Lactobacillus salivarius termasuk dalam kelompok homofermentatif,  sedangkan Lactococcus  lactis ssp  lactis juga  dikelompokkan  dalam  kelompok homofermentatif [22]. Genus Lactobacillus terdiri  atas  banyak spesies  yang  digunakan  untuk  fermentasi  dan pengawet makanan. Dari 106 spesies Lactobacillus , 56 diantaranya berpotensi sebagai probiotik  [23].  Beberapa  probiotik  dari  genus Lactobacillus anatara  lain L.  achidophilus,  L. casei,  L  delbruecki,  L.  reuteri,  L.  brevis,  L. cellobiosus,  L.  curvatus,  L.  fermentum,  L. plantarum,  L.  paracasei,  L.  farmicinis dan L. jonsoni [24]. Selama  pertumbuhannya,  BAL  dapat memproduksi komponen metabolit, seperti asam
organik,  hidrogen  peroksida,  bakteriosin,  dan komponen lainnya. Bakteriosin merupakan suatu péptida  antimikroba  yang  dihasilkan  bakteri asam laktat selama fase pertumbuhan eksponensial  yang  dalam  jumlah  yang  cukup, dapat  membunuh  atau  menghambat  bakteri  lain yang  berkompetisi  dalam  ekologi  yang  sama [25].    BAL  dapat  menghasilkan  molekul  yang menarik  di  antaranya  adalah gamma  amino butirat (GABA) exopolysaccharides (EPS), fructooligosaccharides (FOS),  asam  lemak rantai pendek (SCFA), asam linoleat terkonjugasi  (CLA),  dan  selenoprotein.  Selain itu  BAL  juga  diketahui  sebagai  probiotik,  anti oksidan, anti kanker prostat, pengurang kolesterol,  imunomodulator,  memodulasi  fungsi imunologi, anti-inflamasi dan pro inflamasi [1].

## KESIMPULAN
Berdasarkan hasil penelitian dengan menggunakam  KIT  API  50  CHL  dapat disimpulkan  bahwa  koloni  bakteri  asam  laktat genus Lactobacillus dengan spesies Lactobacillus delbrueckii ssp delbrueckii terdapat  pada  feses  orangutan  Sumatera  (Pongo abelii)  Liar  di  Stasiun  Penelitian  Suaq
Belimbing Aceh Selatan.

## DAFTAR PUSTAKA
[1]  Pessione  E.  2012.  Lactic  Acid  Bacteria Contribution to Gut Microbiota Complexity:  Lights  and  Shadows. Journal Frontiersin Cellular and Infection  Microbiology,  Volume  2  :  1- 15. [2]  Adams,  M.R  and  M.O.  Moss.  2008.  Food Microbiology.  3rd  ed.  The  Royal Society of Chemistry Publishing, UK. [3]  Havenaar,  R.  B.T  .  Brink,  and  J.H.J.  In't Veld.  1992.  Selection  of  strains  for probiotic  use.  In  :  Probiotics,  The Scientific Basis. Ed. Fuler, R. Chapman & Hall, London . pp. 209-224. [4]  Tannock,  G.W.  2002.  Probiotics  and prebiotics.  Where  are  we  going?. Norfolk, UK: Caister Acad Press. [5]  Prasthani  I.  H.P.,  Masdiana  C  Pandaga, Dyah  A.  Oktavianie.  2012.  Isolasi  dan Karakterisasi Bakteri Asam Laktat Asal Feses  Orangutan  ( Pongo  Pygmaeus ) Sebagai  Kandidat  Probiotik.  Student Journal Vet School Universitas Brawijaya Vol. 1. [6]  Syahputra,  Y.  2015.  Isolasi  Bakteri  Asam Laktat  (BAL)  pada  Feses  orangutan Sumatera  ( Pongo  abelii) di  Kebun Binatang  Bukittinggi  Sumatera  Barat, Skripsi .  Fakultas  Kedokteran  Hewan Universitas Syiah Kuala, Banda Aceh. [7]  Hajar  S.,  Safika.,  Darmawi.,  Sary  W.  N., Rahmi  E.,  Syahputra  Y.,  Nurliana., Rinidar.    2016.  Characterization  of Lactic  Acid  Bacteria  (LAB)  Origin Sumatran  Orangutan  ( Pongo  abelii )  In Zoo  Bukittinggi  Based  On  Analysis  16 S  rRNA.  Int.  Journal.  Trop.  Vet. Biomed. Res.2:6-14. [8]  Septiarini, W.E. 2011. Aktivitas Antimikroba  Bakteri  Asam  Laktat (BAL)  yang  Diisolasi  dari  Feses Orangutan  ( Pongo  pygmaeus )  terhadap
Penghambatan  Pertumbuhan  Bakteri
Identifikasi Lactobacillus sp pada Orangutan Sumatera ( Pongo abelii ) Liar Menggunakan KIT API 50 CHL…
Enterik  patogen  secara  In  Vitro. Skripsi . Universitas Brawijaya. Malang. [9]  Qaida  Minati,    Arman  Sayuti,  Idawati Nasution.  2014.  Interpretasi  Ukuran Jantung  Orangutan  Sumatera  ( Pongo abelii )  Berdasarkan  Foto  Rontgen Toraks  Di  Pusat  Karantina  Orangutan Sumatera Utara. Jurnal Medika Veterinaria Vol. 7, No. 2 ; 409-417. [10]  Nater,  A.,  M.P.  Greminger,  A.  Nurcahyo, M.G.  Nowak,  M.  de  Manuel  Montero, T.  Desai,  C.P.  Groves,  M.  Pybus,  T.B. Sonay,  C.  Roos,  A.R.  Lameira,  S.A. Wich, J. Askew, M. Davila-Ross, G.M. Fredriksson,  G.  de  Valles,  F.  Casals,  J. Prado-Martinez,  B.  Goossens,  E.J. Verschoor,  K.  S.  Warren,  I.  Singleton, D.  A.  Marques,  J.  Pamungkas,  D. Perwitasari-Farajallah,  P.  Rianti,  A. Tuuga, I.G. Gut, M. Gut, P. OrozcoterWengel,  C.P.  van  Schaik,  J. Bertranpetit,  M.  Anisimova,  A.  Scally, T. Marques-Bonet, E. Meijaard, and M. Krützen. 2017. in press. Morphometric, behavioural,  and  genomic  evidence  for a  new  orangutan  species.  Current Biology. [11]  Rijksen,  H.D.,  Meijaard,  E.  1999.  Our Vanishing Relative: The status of Wild Orang-utans  at  the  close  the  Twentieth Century.  Kluwer  Academic  Publisher, Dordrecht. [12]  Singleton,  I.,  Wich,  S.,  Husson,  S., Stephens,  S.,  Atmoko,  S.U.,  Leighton, M.,  Rosen,  N.,  Traylor-Holzer,  K., Lacy,  R.  &  Byers,  O.  (eds.).  2004. Orangutan  Population  and  Habitat Viability  Assessment:  Final  Report. IUCN/SSC Conservation Breeding Specialist Group, Apple Valley, MN. [13]  Wich,  S.A,  Meijaard,  E.,  Marshall,  A.J, Huson, S., Ancrenaz, M., Robert, C.L., van  Schaik,  C.P.,  Sugardjito,  J., Simorangkir,  T.,  Kathy,  T.H,  Doughty, M.,  Supriatna,  J.,  Dennis,  R.,  Gumal, M.,  Knott,  C.D.,  &  Singleton,  I.  2008. Distribution  and  conservation  status  of the orang-utan ( Pongo spp ) on Kalimantan and Sumatera: 43(3) : 329- 339. [14]  IUCN.  2017.  IUCN.  Red  List  of Threatened  Species.  Version  3  May 2017. www.iucnredlist.org. [15]  Rahmi  E.,  Agustina  D  dan  Jamin  F.  2014. Isolasi dan Identifikasi Genus Salmonella dan Shigelladari Feses Orangutan  Sumatera  (Pongo  abelii)  di Pusat  Reintroduksi  Orangutan  Jantho, Jurnal  Medika  Veterinaria  Vol.  8    No. 1; 5-8. [16]  Purwani, E., S.W.N. Hapsari, dan R. Rauf. 2009.  Respon  hambatan  bakteri  gram positif  dan  negatif  pada  ikan  nila ( Oreochromis niloticus ) yang diawetkan dengan ekstrak jahe ( Zingiber officinale ). Jurnal Kesehatan. 2(1): 61-70. [17]  Widyastuti  Y.,  Sofarianawati  E.  1999. Karater Bakteri Asam Laktat Enterococus  sp.  yang  Diisolasi  Dari Saluran  Pencernaan  Ternak.  Jurnal Mikrobiologi  Indonesia,  Vol  4  NO.  2  : 50-53. [18]  Sya’baniar  L.,  Erina,  Sayuti  A.  2017. Isolasi  dan  Identifikasi  Bakteri  Asam laktat  (BAL)  Genus Lactobacillus Dari Feses  Orangutan  Sumatera  ( Pongo abelii )  di  Kebun  Binatang  Kasang Kulim  Bangkinang  Riau. JIMVET . 01(3): 351-359. [19]  Campbell,  N.  A.  &  J.  B.  Reece.  2008. Biologi,  Edisi  Kedelapan  Jilid  3. Terjemahan: Damaring Tyas Wulandari. Jakarta: Erlangga. [20]  Salminen,  S.,  Atte  Von  W.,  Arthur  O. 2004. Lactic Acid Bacteria Microbiological and Functional Aspects  Third  Edition.  Revised  and Expanded,  Marcel  Dekker,  Inc., New York. [21]  Winarno  FG,  Ahnan  WW,  Widjajanto  W. 2003.  Flora  Usus  dan  Yoghurt . Bogor (ID): M -BRIO Pr. hlm 9-17. [22]  Holzapfel,  W.H.  and  Wood,  B.J.B.  (2004) Lactic  Acid  Bacteria  Biodiversity  and Taxonomy. John Wiley and Sons, Ltd., United Kingdom. [23]  Otieno, D.O. 2011. Biology of Prokaryotic Probiotics,  In  Probiotics,  Microbiology Monographs  (M.T.  Liong,  ed.)  pp.  1- 25.Springer-Verlag. Berlin.
[24]  Gibson,  G.R.  and  M.  Roberfroid.  2000. Handbook  Ingredients  of  Probiotics. CRC Press, Australia.
[25]  Vasiljevic,  T.  dan  Shah,  N.P.  2008. Probiotics-from Metchnikoff to bioactive. Int  Dairy  J .  Vol.  18  (7)  :
714-728.