Yadi Setiadi et al.

## Studi Status Fungi Mikoriza Arbuskula di Areal Rehabilitasi Pasca Penambangan Nikel

## (Studi Kasus PT INCO Tbk. Sorowako, Sulawesi Selatan)
Study of Arbuscular Mycorrhizal Fungi status at Rehabilitation Post-Nickel Mining Area ( Case study at PT INCO Tbk. Sorowako, South Sulawesi )
Yadi Setiadi 1 dan Arif Setiawan 1
1 Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan IPB

## ABSTRACT
PT  INCO Tbk.  is  one  of  the  biggest  nickel  mining  company  in  the  Asia-Pasific  region  and  has  been  operated commercially in Indonesia since 1978. It is located at Sorowako, South Sulawesi Indonesia with  the area up to 218.000 hectares.  The  mining operation process is  surface  mining. It  eliminated the  existing vegetation,  and  it  will  lead to  soil erosion,  loss  of  biodiversity,  damage  of  wildlife  habitats  and  degradation  of  watershed  area,  considering  with  these negative impacts a revegetation programme is fully needed ( Setiadi 1995 ) . Revegetation that has been done obstacled by the  marginal  land  conditions  where  soil  structure  has  been  damaged  and  it  has  became  a  lateritic  soil.  It  absorbs elements of phosphate (P) , which is essential for plant life. It will be poor of P-available that can be absorbed by plants. Therefore input for more effective technology and environmentally friendly is needed, among others by applying a bio- technology Arbuscular Mycorrhizal Fungi biofertilizer (AMF). It has some functions, one of them is increasing nutrients absorption, especially P. Therefore, research on the existence of mycorrhizal status needs to be done as an introduction for research and application of mycorrhizal in the rehabilitation field of post- nickel mining.
Key word : Rehabilitation, mining, status, mycorrhizal

## PENDAHULUAN
PT  INCO  Tbk.  adalah  salah  satu  perusahaan tambang  nikel  terbesar  di  Asia-Pasifik  dan  telah beroperasi  secara  komersial  di  Indonesia  sejak  tahun 1978.  Lokasi  konsesi  PT  INCO  Tbk.  salah  satunya berada  di  daerah  Sorowako  Sulawesi  Selatan  dengan luas areal pada saat ini sebesar 218.000 ha.
Proses  operasi  penambangan yang dilakukan adalah proses penambangan terbuka, dimana dalam proses ini, mineral  tambang  diambil  dengan  membuka  lapisan tanah yang ada di atasnya. Proses tersebut mengakibatkan kerusakan lingkungan, seperti rusak atau hilangnya  vegetasi,  hewan,  tanah  dan  juga  meng- hilangkan  ekosistem  yang  ada.  Dampak  negatif  dari hilangnya vegetasi antara lain yaitu meningkatnya erosi, hilangnya  keanekaragaman  hayati,  merusak  habitat satwa  liar,  degradasi  areal  penyimpanan  air  (Setiadi, 1995),  untuk  mengurangi  dampak  negatif  yang  terjadi maka perlu dilakukan revegetasi.
Di  lapangan,  proses  revegetasi  ini  tidaklah  mudah untuk  dilakukan.  Area  yang  akan  direvegetasi  kondisi tanahnya  (fisik,  kimia  dan  biologi)  telah  rusak (marginal)  dan  tidak  mampu  mendukung  pertumbuhan tanaman dengan baik. Bibit pohon yang ditanam banyak yang  mati,  dan  untuk  pohon  yang  bertahan  hidup pertumbuhannya  tidak  maksimal  (Setiadi,  1995).  Hal tersebut  disebabkan  karena  tanah  yang  masam, defisiensi  P,  keracunan  logam  Al  dan  Fe,  rendahnya aktivitas  mikroba  dan  juga  mengalami  stress  air.
Dengan  demikian  perlu  dilakukan  usaha-usaha  dengan menggunakan  input  teknologi  agar  dapat  menunjang proses revegetasi tersebut.
Salah  satu  cara  yang  dilakukan  adalah  dengan mengaplikasikan peran fungi mikoriza arbuskula (FMA) sebagai inokulum. FMA merupakan komponen esensial yang  dibutuhkan  untuk  membantu  meningkatkan  daya hidup dan pertumbuhan tanaman, khususnya pada lokasi pasca  tambang  (Kiernan et  al. ,  1983;  Garedner  & Malajczuk,  1988;  Jasper et  al. ,  1988 dalam Setiadi, 1995)
Fungi  ini  dapat membantu proses revegetasi dengan meningkatkan  daya  larut  mineral,  meningkatkan pengambilan  nutrisi,  mengikat  partikel  tanah  menjadi agregat yang stabil dan meningkatkan toleransi terhadap kekeringan dan keracunan logam (Linderman & Pfleger, 1994;  Jasper  1994 dalam Setiadi  1995).  Sehubungan dengan  hal  itu,  penelitian  ini  dilakukan  sebagai  studi awal  untuk  mempelajari  status  dan  potensi mikoriza  di areal tambang.
Tujuan dari penelitian ini adalah sebagai penelitian pendahuluan  untuk  mengetahui  keberadaan  fungi mikoriza  arbuskula  (FMA)  di  areal  rehabilitasi  pasca penambangan nikel PT INCO Tbk.
Manfaat dari hasil penelitian ini adalah bertambahnya  pengetahuan  mengenai  genus-genus spora  indigenous  yang  dapat  dikembangkan  sebagai sumber  inokulum  untuk  meningkatkan  keberhasilan rehabilitasi  hutan  pasca  penambangan,  secara  khusus pada penambangan nikel.

## JURNAL SILVIKULTUR TROPIKA

## BAHAN DAN METODE
Tempat  dan  Waktu. Penelitian  dilaksanakan selama  7  bulan  (Mei  –  November  2010).  Pengambilan contoh tanah dan akar tanaman dilakukan di persemaian dan  areal  rehabilitasi  pasca  tambang  PT  INCO  Tbk, sedangkan  analisis  contoh  tanah  dan  akar  tanaman dilakukan  di  laboratorium  Bioteknologi  Hutan  dan Lingkungan, PPSHB IPB, dan rumah kaca laboratorium Ekologi  Hutan,  Departemen  Silvikultur,  Fakultas Kehutanan, Institut Pertanian Bogor.
Bahan  dan  Alat. Bahan  yang  digunakan  dalam penelitian ini adalah contoh tanah dan akar tanaman dari areal  rehabilitasi  dan  persemaian  PT  INCO,  benih Pueraria javanica , pupuk Hyponex-red , zeolit, Sunclin™,  larutan  glukosa  60%,  KOH  10%,  HCL  2%, larutan  Trypan  Blue  0,05%,  melzer’s  reagent  dan Aquades.
Alat-alat yang digunakan untuk pengambilan contoh tanah  dan  akar  tanaman  adalah  sekop,  kantong  plastik, spidol dan kertas label. Sedangkan untuk pengamatan di laboratorium adalah saringan spora (saringan bertingkat dua yaitu 715 µm, dan 45 µm), sentrifuse , pipet plastik, pinset  spora,  mikroskop,  kaca  preparat, cover  glass , petridish,  pipet,  timbangan  analitik,  gunting  akar, sprayer dan pot plastik ukuran 200 cc.

## Prosedur kerja
Pengambilan contoh tanah dan akar . Pengambilan  contoh  tanah  dan  akar  dilakukan  di  areal rehabilitasi  pasca  penambangan  dan  persemaian  PT INCO  Tbk.  Pengambilan  contoh  dilakukan  pada  areal yang  dapat  mewakili  keadaan  areal  tambang  secara umum.
Pengambilan  contoh  tanah  dari  lapangan  diambil sebanyak  ±  200  gram  untuk  setiap  contoh.  Contoh diambil  di  daerah rhizosfer  dengan  kedalaman ±  10-20 cm.
Sedangkan untuk pengambilan contoh akar, diambil akar  serabut  dari  masing-masing  pohon.  Kemudian dimasukkan  kedalam  plastik  dan  diberi  label  sesuai dengan jenis pohon dan lokasi pengambilan.
Untuk  pengambilan  contoh  tanah  dan  akar  dari persemaian,  dilakukan  dengan  cara,  memotong  bibit pada leher akar  setinggi  ±  1  cm  dari  media.  Kemudian media  dan  akar  tanaman  yang  masih  berada  dalam polybag, dimasukkan ke dalam plastik dan diberi label.
Contoh  yang  diambil  sebanyak  dua  contoh  tiap tanaman.
Pengamatan  infeksi  akar. Untuk  dapat  melihat infeksi  akar,  perlu  dilakukan  pewarnaan  akar. Pewarnaan  akar  dilakukan  dengan  metode  Phyllip  dan Hyman  (1970)  yang  dimodifikasi.  Tahapan  pewarnaan tersebut ialah :
1. Contoh akar dilapangan dipotong dan diambil akar serabut  pada  bagian  samping  kiri  dan  samping kanan, dari batang pokok.
2. Pada  saat  di  laboratorium,  akar  yang  akan  diamati dicuci  dengan  air  mengalir  hingga  kotoran  dan tanah yang menempel hilang.
3. Akar  direndam  dalam  larutan  KOH  10%,  sampai akar berwarna putih atau kuning bening,
4. Akar  dibilas  dengan  air  bersih  agar  KOH-nya hilang.
5. Akar direndam dalam larutan HCL 2% selama ±24 jam.
6. Akar  dibilas  dengan  air  bersih  agar  HCL-nya hilang.
7. Akar direndam  dengan larutan staining trypan blue 0,05% sampai akar berwarna biru.
Untuk pengamatan akar, dilakukan dengan memotong  akar  yang  telah  diwarnai  sepanjang  1  cm, kemudian akar ditata di atas preparat dan ditutup dengan cover  glass ,  jumlah  akar  tiap  preparat  sebanyak  10 potong.  Infeksi  akar  dapat  dilihat  melalui  adanya vesikula, arbuskula, hifa maupun spora yang menginfeksi akar
Perhitungan infeksi akar. Perhitungan infeksi akar digunakan rumus Giovannety dan Mosse (1980) sebagai berikut :
Akar terinfeksi (%) = ∑contoh akar terinfeksi X 100% ∑contoh seluruh akar yang diamati

## Ekstraksi dan identifikasi spora
Ekstraksi  dan  identifikasi  spora  langsung  dari contoh  tanah. Ekstraksi  spora  dilakukan  agar  spora terpisah  dari  contoh  tanah  sehingga  indentifikasi  spora FMA dan jumlahnya dapat diketahui.
Teknik  tuang-saring  dari  Pacioni  (1992)  adalah teknik  yang  digunakan  untuk  mengekstraksi  spora. Prosedur  kerjanya  yaitu,  pertama,  contoh  tanah sebanyak  50 gram  dicampurkan dengan 400-500 ml air dan  diaduk  sampai  butiran-butiran  tanahnya  hancur. Selanjutnya  disaring  dalam  satu  set  saringan  dengan ukuran 710 µmdan 45 µm, secara berurutan dari atas ke bawah.  Saringan bagian atas disemprot  dengan air kran untuk  memudahkan  bahan  saringan  lolos.  Kemudian saringan  paling  atas  dilepas,  dan  pada  saringan  kedua tersisa  sejumlah  tanah  yang  tertinggal  pada  saringan terbawah dipindahkan ke dalam tabung sentrifuse . Setelah  didapatkan  hasil  saringan  tanah  dalam tabung sentrifuse ,  langkah  selanjutnya  adalah  tabung tersebut  di sentrifuse dengan  teknik  sentrifugasi  dari Brundet et al . (1996). Teknik sentrifugasi Brundet et al. dalam  Sari  (2008)  yaitu,  hasil  saringan  tanah  dalam tabung sentrifuse ditambahkan glukosa 60%  sampai 2/3 isi  tabung.  Tabung sentrifuse ditutup  rapat  dan  di sentrifuse dengan kecepatan 2500 rpm selama 5 menit. Selanjutnya  cairan  yang  bening  diambil  dan dituangkan  kedalam  saringan  yang  berukuran  45  µm, lalu  dicuci  dengan  air  mengalir  untuk  menghilangkan gulanya. Setelah dicuci, spora yang ada dipindahkan ke dalam  cawan  petri  dan  dihitung  jumlahnya,  untuk identifkasi  menggunakan  metode  Schenk  dan  Perez (1990),  spora  dilakukan  melalui  pengamatan morfologi spora  dan  preparat  slide  spora  yang  diwarnai  dengan pewarnaan melzer’s reagent  setelah  dapat  dilihat dibawah mikroskop kemudian diidentifikasi genusnya.
Penangkaran ( trapping ) spora FMA. Ada kemungkinan  spora  yang  tidak  teramati  apabila pengamatan  dilakukan  dari  contoh  tanah  secara
Yadi Setiadi et al.
langsung,  hal  ini  karena  mikoriza  masih  dalam  bentuk miselia  dan  belum  menghasilkan  spora.  Trapping atau penangkaran spora dilakukan untuk mengembangbiakan spora  dari  contoh  tanah  yang  telah  diambil,  sehingga dapat  diketahui  keseluruhan  jenis  spora.  Teknik trapping yang digunakan mengikuti metode Brundrett et al. (1996)  dengan  metode  kultur  pot  terbuka  yang dimodifikasi yaitu dengan menggunakan tanaman inang Pueraria  javanica dan  media  yang  digunakan  untuk trapping adalah batuan zeolit.
 Penyiapan media
Pada  penelitian  ini  digunakan  media  zeolit.  Media trapping  dibuat  dengan  cara  pot  ukuran  200  cc  diisi dengan  zeolit  hingga  setengah  volume  pot,  kemudian disi  dengan  contoh  tanah  sebanyak  50  gram,  dan terakhir  ditutup  kembali  dengan zeolit,  sehingga  media akan  tersusun  atas  zeolit  -  contoh  tanah  –  zeolite (Delvian, 2006).

##  Pemilihan tanaman inang
Tanaman inang yang dapat dipakai adalah tanaman yang terbukti cocok dengan jenis-jenis FMA dan media. Beberapa  jenis  yang  dapat  dipakai  adalah  sorgum, tegetes,  ceplukan,  pueraria,  dan  rumput  sudan  grass (Setiadi dan Hariangbanga, 2009).
Tanaman inang yang digunakan untuk penelitian ini adalah Pueraria javanica.
 Pemeliharaan
Pemeliharaan  yang  dilakukan  adalah  penyiraman setiap  dua  kali  sehari  di  pagi  dan  sore  hari.  Selain  itu juga  dilakukan  pemupukkan  setiap  dua  kali  dalam seminggu  menggunakan  pupuk Hyponex-red (dosis  1 gram  dilarutkan  dalam  1  liter  air)  sebanyak  20  ml  per pot (Delvian 2006).
 Pengeringan dan Pemanenan Hasil Trapping.
Menurut Invam (2010), kultur paling tidak berumur empat  bulan  untuk  dapat  dipanen.  Pada  saat  kultur berumur  3,5  bulan,  penyiraman  dan  pemupukkan dihentikan  dan  tanaman  dibiarkan  mengering  perlahan. Setelah  kultur  berumur  4  bulan  dilakukan  pemanenan dengan  cara  memotong  batang  tanaman  inang.  Hasil dari trapping berupa inokulum spora yang akan diproses lebih lanjut yaitu ekstraksi dan identifikasi spora.
 Ekstraksi dan identifikasi spora dari hasil penangkaran ( trapping ) .
Ekstraksi  dan  identifikasi  spora  menggunakan teknik  yang  sama  dengan  ekstraksi  dan  identifikasi spora  langsung  dari  contoh  tanah,  namun  pada  spora hasil trapping tidak perlu digunakan teknik sentrifugasi.
Perhitungan  spora. Perhitungan  spora  dilakukan untuk  mengetahui  kepadatan  spora.  Kepadatan  spora adalah  banyaknya  spora  tiap  contoh  tanah  yang dianalisis.  Kepadatan  spora  dihitung  dengan  dengan rumus :
Kepadatan  spora  =  jumlah  spora  /  jumlah  tanah  yang dianalisis
Sehingga  untuk  menghitung  kepadatan  spora  pada analisis contoh tanah sebanyak 50 gram adalah :
Kepadatan spora = jumlah spora / 50 gram

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil. Hasil  pengukuran  status  infeksi,  miselia  dan spora, asosiasi genus FMA dari beberapa jenis tanaman yang diamati (Tabel 1-2).
Tabel 1.  Status infeksi, miselia dan spora FMA
No Jenis tanaman Nama latin Infeksi Miselia Spora 1  Belulang Stemonurus celebicus +++ ++ + 2  Betao Calophyllum sp. ++ + + 3  Bitti Vitex coffasus ++ ++ + 4  Buri Weinmannia blumei ++ + + 5  Dengen Dillenia cerrata +++ +++ + 6  Ekaliptus Eucalyptus urograndis ++ ++ + 7  Ficus Ficus sp. +++ + + 8 Jambu- jambu Syzygium sp. ++ + + 9  Jati Tectona grandis +++ +++ ++ 10  Johar Cassia siamea ++ ++ ++ 11 Kayu angina Casuarina equisetifolia +++ ++ ++ 12 Kayu tanduk Alstonia spectabilis +++ +++ ++ 13  Kolaka Maranthes corymbosa ++ + + 14  Krei paying Filicium decipiens + + + 15  Malotus Malotus sp. ++ ++ ++ 16  Nyatoh Palaquium obovatum + + + 17  Saga Adenanthera pavonina ++ + +++ 18 Sengon albizia Paraserianthes falcataria +++ ++ ++ 19 Sengon buto Enterolobium macrocarpum +++ +++ +++ 20  Uru Elmerillia tsiampacca + + + Ket: + : Sedikit ++ : Sedang
+++
: Banyak
Tabel 2.  Asosiasi genus FMA No Jenis tanaman Nama latin Genus Spora 1  Belulang Stemonurus celebicus Glomus 2  Betao Calophyllum sp. Glomus 3  Bitti Vitex coffasus Glomus, Acaulospora 4  Buri Weimannia blumei Glomus 5  Dengen Dillenia cerrata Glomus, Acaulospora 6  Ekaliptus Eucalyptus urograndis Glomus, Acaulospora, Gigaspora 7  Ficus Ficus sp. Glomus, Gigaspora 8  Jambu-jambu Syzygium sp. Glomus 9  Jati Tectona grandis Glomus 10  Johar Cassia siamea Glomus, Acaulospora, Gigaspora 11  Kayu angin Casuarina equisetifolia Glomus, Acaulospora, Gigaspora 12  Kayu tanduk Alstonia spectabilis Glomus, Gigaspora 13  Kolaka Maranthes corymbosa Glomus 14  Krei payung Filicium decipiens Glomus 15  Malotus Malotus sp. Glomus, Acaulospora 16  Nyatoh Palaquium obovatum Glomus 17  Saga Adenanthera pavonina Glomus 18 Sengon albizia Paraserianthes falcataria Glomus, Acaulospora, Gigaspora 19  Sengon buto Enterolobium macrocarpum Glomus, Acaulospora, Gigaspora 20  Uru Elmerillia tsiampacca Glomus, Acaulospora
Hasil  Pengukuran  rata-rata  kepadatan  dan  genus spora (Tabel 3).
Tabel 3.  Rata-rata kepadatan dan genus spora tiap blok
BLOK Rata-rata kepadatan spora / 50 g Genus spora Fiona 253 Glomus, Acaulospora, Gigaspora Petea 234 Glomus, Acaulospora Manggali 209 Glomus, Acaulospora Konde 122 Glomus, Acaulospora, Gigaspora Deby 55 Glomus, Acaulospora, Gigaspora Nursery 46 Glomus, Acaulospora
Hasil pengukuran analisis tanah (Tabel 4).
Tabel 4.  Analisis tanah Lokasi Ph (1:1) N P K Al Jenis Deby 6,5 0,18 4,3 70 Tr  lempung berdebu Fiona 6,6 0,17 4,6  38,75  Tr  lempung berdebu Konde 6,7 0,19 4,1 30 Tr  lempung berdebu Manggali 6,5 0,2 3,9 52,5 Tr  lempung berdebu Nursery 6,7 0,52  18,6  154,3  Tr  lempung berpasir Petea 6,6 0,12 9,4  56,25  Tr  lempung berdebu

## Pembahasan
Infeksi  FMA. Terjadinya  asosiasi  antara  fungi mikoriza  arbuskula  (FMA)  dapat  diketahui  dengan  ada tidaknya  infeksi  yang  yang  terjadi.  Infeksi  FMA  dapat diketahui  dengan  adanya  struktur-struktur    yang dihasilkan  oleh  FMA  antara  lain,  yaitu  :  hifa,  miselia, vesikula,  arbuskula,  maupun  spora.  Hifa  adalah  salah satu  struktur  dari  FMA  berbentuk  seperti  benang- benang  halus  yang  berfungsi  sebagai  penyerap  unsur hara  dari  luar.  Miselia  merupakan  kumpulan  dari  hifa. Arbuskula  adalah  unit  kolonisasi  yang  telah  mencapai sel  korteks  yang  lebih  dalam    letaknya  dan  menembus dinding  sel  serta  membentuk  sistem  percabangan  hifa yang  kompleks,  tampak  seperti  pohon  kecil  yang mempunyai  cabang-cabang  (Gunawan  1993),  struktur ini  berperan  sebagai  tempat  pertukaran  unsur  hara  dan karbon  (Hudson  1989).  Hudson  (1989)  menjelaskan bahwa  vesikula  adalah  struktur  menggelembung  yang dibentuk  pada  hifa-hifa  utama,  berfungsi  sebagai  organ penyimpan.    Struktur  ini  juga  berfungsi  sebagai  spora istirahat  (Setiadi  1989).  Dengan  adanya  satu  atau  lebih struktur  FMA  tersebut,  maka  dapat  dikatakan  terjadi infeksi oleh FMA.
Dari  hasil  pengamatan,  beberapa  struktur  yang ditemukan  dalam  contoh  akar  antara  lain,  yaitu  :  hifa, miselia,  vesikula  dan  arbuskula.  Untuk  lebih  jelasnya dapat dilihat pada gambar berikut ini :
(a) (b) (c)
Gambar 1.  Hifa (a), Vesikula (b), Arbuskula (c).
Dari  hasil  pengamatan  diketahui  bahwa  100% tanaman  atau  seluruh  tanaman  telah  terinfeksi  oleh FMA. Hal ini menunjukkan bahwa asosiasi antara FMA dengan  akar  tanaman  berkembang  sangat  baik.  Namun persentase  infeksi  tiap  tanaman  berbeda  satu  dengan yang  lain.  Untuk  lebih  jelasnya  dapat  dilihat  pada diagram berikut.
Gambar 2.  Diagram % infeksi pada tiap tanaman Pada  tiap-tiap  tanaman  memiliki  persentase  infeksi yang  berbeda-beda,  hal  ini  kemungkinan  disebabkan oleh  perbedaan  beberapa  faktor  yang  mempengaruhi infeksi  mikoriza  terhadap  tanaman,  antara  lain  yaitu  :
Hifa Vesikula Arbuskula
Yadi Setiadi et al.
kebergantungan  tanaman  terhadap  mikoriza,  efektifitas isolat, maupun kondisi nutrisi terutama unsur P (Setiadi 1995).
Secara  umum  infeksi  yang  terjadi  cukup  baik, dimana terdapat 8 jenis tanaman yang terinfeksi ≥75%, 11 jenis tanaman dengan infeksi 51-74% , dan hanya  3 tanaman  yang  terinfeksi  ≤50%.  Jenis-jenis  tanaman dapat dilihat  di gambar 2. Diagram  % infeksi pada  tiap tanaman.
Dari  diagram  diatas,  persentase  infeksi  tertinggi terdapat  pada  jenis  Sengon  buto  ( Enterolobium macrocarpum )  dan  juga  Dengen  ( Dillenia  cerrata ) dengan persentase infeksi mencapai 95%.  Sengon buto merupakan  jenis  eksotik  yang  digunakan  untuk revegetasi,  jenis  ini  termasuk  pohon  cepat  tumbuh. Sedangkan  Dengen  merupakan  jenis  lokal  yang digunakan untuk program revegetasi.
Walaupun  hasil  dari  pengamatan  menunjukkan bahwa  100%  tanaman  terinfeksi  mikoriza,  akan  tetapi tidak  semua  jenis  tanaman  selalu  memberikan  respon positif terhadap aplikasi FMA. Hal ini selain ditentukan oleh  tingkat  efektivitas  isolat  dan  juga  status  nutrisi substrat  yang  dipakai,  juga  sangat  ditentukan  oleh ketergantungan  tanaman  tersebut  terhadap  mikoriza (Setiadi 1995).
Genus spora yang ditemukan. Dalam penelitian ini status  FMA  dibatasi  hingga  tingkat  genus.  Dari  hasil pengamatan, diperoleh tiga genus dari tujuh genus FMA yang  ada.  Genus  yang  ditemukan  dari  yang  terbanyak antara lain, yaitu: Glomus, Acaulospora, dan Gigaspora. Ketiga  genus  tersebut  telah  teruji  efektif  dan  mampu berkembang dengan baik pada areal revegetasi.
Glomus  adalah  genus  mikoriza  dari  family glomaceae.  Glomus  adalah  genus  yang  memiliki keberagaman jenis tertinggi dari yang lain, beberapa ciri khas dari genus ini yaitu spora terbentuk secara tunggal ataupun  berpasangan  dua  pada  terminal  hifa  non- gametangium yang tidak berdiferensiasi dalam sporocarp,  pada  saat dewasa  spora  dipisahkan  dari  hifa pelekat  oleh sebuah sekat,  spora  berbentuk  globos sub- globos,  ovoid  ataupun  obovoid  dengan  dinding  spora terdiri  dari  lebih  dari  satu  lapis,  berwarna  hyaline sampai  kuning,  merah  kecoklatan,  coklat,  dan  hitam, berukuran antara 20 – 400 µm  (Sen dan Hepper, 1986; Invam, 2010).
Dalam  satu  genus  mikoriza  terdapat  banyak  jenis atau spesies. Dari  pengamatan diperoleh beberapa jenis glomus dengan karakteristik yang berbeda (jenis/spesies yang  berbeda).  Untuk  lebih  jelasnya  dapat  dilihat  pada gambar berikut ini.
Gambar 3. Glomus sp.1               Gambar 4. Glomus sp.2
Gambar 5.  Glomus sp.3             Gambar 6.  Glomus sp.4
Gambar 7.  Glomus sp. pada larutan melzer’s reagent
Acaulospora  adalah  genus  mikoriza  yang  termasuk dalam  family  Acaulosporaceae.  Genus  ini  memiliki beberapa  ciri  khas  antara  lain  yaitu  memiliki  2-3 dinding  spora,  spora  terbentuk  di  sisi  samping  leher Sporiferous    Saccule ,  berbentuk  globos  hingga  elips, berwarna  hyaline,  kuning,  ataupun  merah  kekuningan, berukuran antara 100-400 µm (Invam, 2010).
Untuk  lebih  jelasnya  dapat  dilihat  pada  gambar berikut ini.
Gambar 8.  Acaulospora sp.     Gambar 9. Sporiferous Saccule
Gambar 11.  Acaulospora sp. pada larutan melzer’s reagent
Gigaspora  adalah  genus  mikoriza  yang  termasuk dalam  family  Gigasporaceae.  Genus  ini  memiliki  ciri khas,  antara  lain  yaitu  spora  dihasilkan  secara  tunggal didalam  tanah,  tidak  memiliki  lapisan  dinding  spora dalam,  terdapat Bulbous  Suspensor ,  berbentuk  globos atau  sub-globos,  berwarna  krem  hingga  kuning, berukuran  125-600  µm  (Wilson et  al. ,  1983;  Invam, 2010)
Untuk  lebih  jelasnya  dapat  dilihat  pada  gambar berikut ini.
Sporiferous Saccule
Gambar 12.  Gigaspora sp.       Gambar 13. Bulbous Suspensor
Gambar 14.  Gigaspora sp. pada larutan melzer’s reagent
Perkembangan FMA pada areal rehabilitasi. Dari beberapa  penelitian  diketahui  bahwa  simbiosis  FMA dipengaruhi oleh level P, sumber P, pH, efektifitas isolat FMA  dan  kebergantungan  tanaman  inang  terhadap mikoriza (Setiadi, 1995).
Dari  hasil  analisis  tanah  diketahui  bahwa  kondisi lahan  memiliki  pH  berkisar  antara  6,5-6,7  dan kandungan  logam  Al  tidak  teramati  atau  sangat  kecil, dan  kandungan  P  rendah  hingga  sedang,  serta  tekstur tanah berupa lempung berdebu.
Sifat  kimia  tanah  relatif  normal,  dimana  tanah tersebut  memiliki  pH  netral  dan  tidak  mengalami keracunan  logam  Al  (kandungan  Al  sangat  kecil). Kondisi  ini  sangat  berbeda  dari  kondisi  lahan  pasca penambangan  nikel,  dimana  lahan  biasanya  memiliki tanah  yang  masam  (pH  rendah),  keracunan  logam  Al dan  Fe,  rendahnya  aktivitas  mikroba  dan  juga mengalami  stress  air  sehingga  lahan  menjadi  marginal (Setiadi  1995).  Hal  ini  kemungkinan  dikarenakan  pada areal  rehabilitasi  telah  dilakukan  penimbunan  top  soil pada saat proses penataan lahan. Sehingga kondisi lahan menjadi lebih mendukung untuk proses revegetasi.
Namun  demikian  pada  lahan  rehabilitasi  tersebut memiliki kandungan P yang sangat rendah, dimana P < 10  ppm  (Hardjowigeno  1995).  Faktor  pembatas  dari areal  ini  adalah  rendahnya  unsur  P  yang  penting  bagi tanaman.  Unsur  P  merupakan  unsur  hara  makro  bagi tumbuhan. Dimana P berperan dalam proses fotosintesis,  metabolisme  karbohidrat,  dan  transfer energi dalam tubuh tanaman (Ernita 2004).
Beberapa  FMA  dapat  berkembang  baik  pada  lahan tersebut,  dimana  pH  optimum  untuk  perkembangan FMA adalah berkisar antara 5,6-7 untuk Glomus sp; 4-6 untuk Gigaspora sp.  dan  4-5  untuk Acaulospora sp. (Setiadi  1992;  Gunawan,  1993;  Hepper,  1984 dalam Tuheteru 2003).
DE BY FIO NA KO ND E M AN GG AL I NU RS ER Y PE TE A 55 253 122 209 46 234 0 100 200 300 spora tiap blok

## Rata-rata kepadatan spora/50g
Gambar 15.  Diagram  rata-rata  kepadatan  spora  tiap blok
Dari  diagram  diatas  dapat  dilihat  bahwa  per- kembangan spora cukup baik, dimana dapat dilihat dari rata-rata  kepadatan  spora/50  g.  Untuk  areal  rehabilitasi perkembangan  paling  baik terdapat di  Fiona,  kemudian Petea,  Manggali,  Konde  dan  terakhir  Deby.  Untuk dilapangan,  diketahui  bahwa  spora  berkembang  cukup baik, hal ini dikarenakan pada areal tersebut mengalami defisiensi  P.  Menurut  Hepper  (1983)  dalam  Tuheteru (2003)  bahwa  perkecambahan Glomus sp.  Akan berkurang dengan meningkatnya konsentrasi P, sehingga  makin  kecil  konsentrasi  P  maka  FMA  akan berkembang lebih baik.
Untuk  di  Nursery,  perkembangan FMA relatif lebih sedikit,  hal  ini  dikarenakan  tanaman  di  Nursery mendapatkan hara  yang cukup terutama  P yang berasal dari  pemupukkan  sebagai  langkah  perawatan  bibit. Dengan  adanya  pemupukkan  kandungan  P  meningkat, sehingga  perkembanga  FMA  berkurang,  hal  ini  sesuai dengan  Delvian  (2006)  perkembangan  mikoriza  akan terhambat dengan adanya pemupukkan P.
Apabila  ditinjau  dari  sifat fisik tanahnya, dari  hasil analisis tanah diketahui bahwa tanah tersebut bertekstur lempung.  Tanah  lempung  memiliki  aerasi  yang  buruk terutama  saat  terjadi  hujan,  hal  ini  akan  menyebabkan tanah  kekurangan  oksigen.  Menurut  Setiadi  (1992) penurunan  konsentrasi  oksigen  dapat  menghambat perkecambahan  spora  FMA  dan  kolonisasi  akar.    Oleh karena itu perkembangan FMA akan menurun.
Dari beberapa jenis tanaman yang diamati, diketahui bahwa  kepadatan  spora  tiap  jenis  tanaman  berbeda- beda.  Hasil  pengamatan  dapat  dilihat  pada  diagram dibawah ini.
Gambar 16.  Diagram  kepadatan  spora  pada  tiap  jenis tanaman (/50 gram)

## Bulbous Suspensor
45 45 38 21 84 87 35 23 154 151132 135 26 27 156 33 232 188 477 39 0 100 200 300 400 500 600 Be lu lan g
B e ta o B itt i Bur i
D e n ge n
Eka li p tu Fi cu s Jamb u - Jat i
Jo h ar K ay u K ay u K o lak a K re i M al o tus Ny ato h Sag a Se n gon
Se n gon Uru
Yadi Setiadi et al.
94 Kepadatan spora tertinggi terdapat pada Sengon buto ( Enterolobium macrocarpum ) dengan kepadatan mencapai  477  spora/50  g  tanah  kemudian  Saga ( Adenanthera  pavonina )  dengan  kepadatan  spora sebesar  232  spora/50g.  Kemudian    diikuti  oleh  Sengon Albizia, Malotus, Jati, Johar, Kayu tanduk, Kayu angin, Ekaliptus,  Dengen,  Belulang,  Betao,  Uru,  Bitti,  Ficus, Nyatoh, Krei payung, Kolaka, Jambu-jambu dan paling sedikit adalah Buri.
Dari  hasil  penelitian  ini,  dapat  dilihat  bahwa persentase  infeksi  tidak  berbanding  lurus  dengan kepadatan  spora,  dimana  tingginya  persentase  infeksi tidak  selalu  memperbesar  kepadatan  spora.  Hal  ini sesuai  dengan  Tuheteru  (2003)  bahwa  antara  infeksi akar  dan  jumlah  spora  yang  dihasilkan  tidak  memiliki korelasi  yang  erat,  sehingga  spora  yang  banyak  belum tentu persentase infeksi akar akan tinggi pula.
Potensi  FMA  dalam  revegetasi  lahan  pasca penambangan nikel. Telah banyak penelitian mengenai potensi  dari  FMA  baik  dalam  pertanian  maupun kehutanan.  Dimana  kebanyakan  hasil  penelitian menunjukkan  hasil  yang  membuktikan  bahwa  FMA dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman, meningkat- kan penyerapan hara,  pelindung hayati ( Bio-protector ), memperbaiki siklus biogeokimia, meningkatkan resistensi  terhadap  kekeringan  dan  keracunan  logam berat, serta memperbaiki struktur tanah (Setiadi  2001)
Masalah  yang  terjadi  dalam  program  revegetasi antara  lain  adalah  tanaman  yang  ditanam  banyak  yang mengalami  kematian,  apabila  tanaman  tersebut  mampu hidup,  biasanya  pertumbuhannya  buruk (Setiadi, 1995). Untuk  itu  FMA  sangat  diperlukan untuk  meningkatkan keberhasilan program revegetasi.
Secara  ekologis,  FMA  adalah  pupuk  hayati  yang ramah  lingkungan  dan  tidak  menyebabkan  pencemaran lingkungan  seperti  pupuk  kimia.  Selain  itu  secara ekonomis,  aplikasi  FMA  sangat  efektif  dan  efisien, dimana  FMA  mampu  mengefisiensikan  penggunaan pupuk dengan hifa eksternalnya yang bisa mengirimkan hingga  80% P, 25% N, 10% K, 25% Zn,  dan 60 % Cu (marschner  dan  dell,  1994, dalam Setiadi,  1995) ditambahkan  oleh  Santoso et  al. (2006)  penggunaan mikoriza  mengefisiensikan  penggunaan  pupuk  kimia hingga  lebih  dari  50%  di  tingkat  persemaian.  Menurut Ambodo  (2004)  Aplikasi  mikoriza  pada  penanaman  di lapangan mampu menurunkan pemakaian pupuk hingga 40%,  dan  meningkatkan  pertumbuhan  tanaman  hingga 466% dibandingkan dengan pemakaian pupuk konvensional.
Selain itu FMA merupakan pupuk yang hanya cukup sekali  digunakan  ( once  application ),  karena  FMA merupakan makhluk hidup yang dapat terus tumbuh dan berkembang.
Evaluasi  status  FMA. Dilaporkan  oleh  Setiadi (1995)  bahwa  tiga  genus  yang  di  uji  coba  memberikan pengaruh  terhadap  pertumbuhan Acacia  mangium , Paraserianthes  falcataria ,  dan Trichospermum  burretii di  persemaian,  dimana  genus  yang  digunakan merupakan  genus  eksotik  yaitu  Glomus  sp.  (INVAM- FL216)  dan Gigaspora sp.  (INVAM-FL105),  serta
genus  indigenous  yaitu  Acaulospora  sp.  (INCO-1  dan INCO-2).
Dari  hasil  pengamatan  diketahui  bahwa  genus Glomus sp; Gigaspora sp;  dan Acaulospora sp.  dapat berkembang cukup baik di lapangan. Genus Glomus sp. dan Acaulospora sp.  ditemukan  berkembang  baik  di semua blok, sedangkan Gigaspora sp. hanya ditemukan di tiga blok saja yaitu blok deby, fiona dan konde.
Genus-genus  indegenous  mampu  beradaptasi  dan berkembang  baik  pada  daerah  asalnya,  hal  ini dibuktikan  dengan  genus Acaulospora sp.  yang ditemukan  disetiap  blok.  Namun  tidak  menutup kemungkinan  bahwa  genus-genus  eksotik  mampu berkembang  baik,  bahkan  lebih  baik  daripada  genus- genus  indigenous,  seperti Glomus sp.  yang  dapat berkembang  sangat  baik  di  semua  areal  rehabilitasi pasca penambangan dan persemaian PT INCO Tbk.

## KESIMPULAN
Dari penelitian ini dapat disimpulkan bahwa terdapat tiga  genus  FMA  yang  mendominasi  areal  rehabilitasi pasca  penambangan  nikel  di  PT  INCO  Tbk,  yaitu  : Glomus  sp;  Acaulospora  sp;  dan  Gigaspora  sp.  Genus- genus  tersebut  terbukti  berkembang  baik  pada  areal rehabilitasi  dan sangat potensial  dikembangkan sebagai inokulum  untuk  kegiatan  rehabilitasi  lahan  pasca penambangan nikel.

## DAFTAR PUSTAKA
Achmad,  Wilarso  S,  Mansur  I,  dan  Setiadi  Y.1992. Petunjuk  Laboratorium  Mikrobiologi  Tanah  Hutan. Bogor. Centre for International Forestry Research.
Brundrett  M,  Neale  B,  Bernei  D,  Tim  G  dan  Nick  M. 1996.  Working  With  Mycorrhizas  in  Forestry    and Agriculture.  Australian  Centre  for  International Agriculture Research (ACIAR). Canbera: Australia.
Ernita. 2004. Pemanfaatan Mikroba Pelarut Phospat dan Mikoriza  sebagai  Alternatif  Pengganti  Pupuk Phospat  Pada  Tanah  Ultisol  Kabupaten  Langkat Sumatera  Utara.  Jurnal  Penelitian  Bidang  Pertanian Vol  2  No  3.  Desember  2004:  45-55.  UMN  Al- Washllyah Medan.
Gerdemann JW. 1968. Vesicular-Arbuscular
Mycorrhiza  and  Plant  Growth.  Annu.  Rev.
Phytopath. 6: 397-418.
Invam. 2010. Classification of Glomeromycota [terhubung  berkala].  http://invam.caf.wvu.edu/  [18 Oktober 2010].
Sari LM. 2008. Keberadaan Mikoriza pada areal Sistem Silvikultur  Tebang  Pilih  Tanam  Indonesia  Intensif (Studi  kasus  di  Areal  IUPHHK  PT  Bumi  Kusuma Unit  Sungai  Seruyan  Kalimantan  Tengah  [Skripsi]. Bogor: Program Sarjana, Institut Pertanian Bogor.
Schenk NC, Perez Y. 1990. Manual for Identification of VA  Mycorrizhal  Fungi.  Florida.  University  of Florida.
Setiadi  Y.  1989.  Pemanfaatan  Mikroorganisme  Dalam Kehutanan. PAU-IPB. Bogor.
Setiadi  Y.  1992.  Mikoriza  dan  Pertumbuhan  Tanaman. Departemen Pendidikan dan Kebudayaan, Direktorat Jenderal  Pendidikan Tinggi  Pusat  Antar  Universitas IPB. Bogor
Setiadi Y. 1993. Mycorrhiza for reforestation.  Makalah presentasi  di  Biodiversity-Biotechnology  Inovation Symposium. British Council. Jakarta, 3 Mei 1993.
Setiadi  Y.  1995.  The  Practical  Application  of Arbuscular  Mycorrizhae  Fungi  for  Reforestation  in Indonesia  [Thesis].  Kent:  Research  School  of Biosciences, University of Kent.
Setiadi  Y  dan  Hariangbanga  G.  2007.  Revegetation Techniques  for  Rehabilitating  Degraded  Land  After Post  Mining  and  Oil/Gas  Operation.  [tidak dipublikasikan]
Sieverding E. 1991. Vesicular Arbuscular Mychorrizhal Management  in  Tropical  Agrosystems  (GTZ). Federal Republic of Germany.
Sondergaard  M,  Laegaard  S.  1977.  Vesicular- Arbuscular  Mycorrhiza  in  Some  Aquatic  Vascular Plants. Nature 268: 232-233.
Tuheteru  FD.  2003.  Aplikasi  Asam  Humat  Tergadap Sporulasi CMA Dari Bawah Tegakan Alami Sengon [Skripsi]. Bogor: Program Sarjana, Institut Pertanian Bogor.