Efektivitas biji pepaya (Carica papaya L ) dalam menurunkan fungsi reproduksi ikan nila gift, Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758)
[The effectiveness of the papaya seed ( Carica papaya L) for reproductive function of Tilapia,
Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758)]
Munawar Khalil 1,2)  , Yunidar 1 , Mahdaliana 1 , Munawwar Khalil 1 , Rachmawati Rusydi 1 dan Zulfikar 1,2
1 Program Studi Akuakultur, Fakultas Pertanian Universitas Malikussaleh 2 Program Studi Ilmu Kelautan, Fakultas Pertanian Universitas Malikussaleh Kampus Utama Reuleut, Kecamatan. Muara Batu, Kabupaten Aceh Utara, Provinsi Aceh.
Diterima: 10 Mei 2018; Disetujui: 31 Desember 2018

## Abstrak
Ikan introduksi di Indonesia telah menimbulkan beberapa dampak negatif terhadap ekologi perairan, diantaranya adalah menurunnya spesies ikan asli. Penanganan dampak negatif ikan-ikan introduksi dapat diminimalkan dengan cara me- nurunkan angka fertilitas melalui penggunaan ekstrak senyawa tumbuhan. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Mei – Juni 2016 yang bertujuan untuk menganalisis efektivitas tepung biji pepaya ( Carica  papaya L) dalam menurunkan fungsi  reproduksi  ikan  nila Oreochromis  niloticus. Rancangan  penelitian  yang  digunakan  adalah  rancangan  acak lengkap non-faktorial dengan lima perlakuan tiga ulangan yaitu A: Kontrol (tanpa pemberian tepung), B: Pemberian 40 mg, C: 50 mg, D: 60 mg, E: 70 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan. Ikan sampel yang digunakan adalah induk ikan nila sebanyak 45 ekor yang berumur 4-5 bulan dengan berat bobot tubuh 200 g untuk induk betina dan 250 g untuk induk jantan. Parameter yang diukur ialah daya konsumsi pakan, jumlah telur (fekunditas), tingkat pembuahan  telur,  tingkat  penetasan  telur,  dan  morfologi  sperma.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  tepung  biji pepaya  memberikan  efek  terhadap  abnormalitas  sperma  dan  menurunkan  sintasan  sperma,  dan  penurunan  tingkat pembuahan telur (fertilitas rendah). Analisis statistik menunjukkan bahwa pemberian tepung biji pepaya memberikan pengaruh yang berbeda nyata (P<0,05) antar perlakuan pada parameter persentase pembuahan dan penetasan telur, namun tidak berbeda nyata terhadap parameter  sintasan (P>0,05).  Angka  motilitas sperma terendah dijumpai pada perlakuan E yaitu 00.45”.032/detik. Jumlah telur pada penelitian ini berkisar rata-rata 994,33-1416 butir dengan nilai pembuahan terendah dan penetasan terendah terdapat pada perlakuan E dengan persentase 58,58% dan 99,24%.
Kata penting: ikan nila, morfologi sperma, mortilitas sperma; fertilisasi

## Abstract
Introduced  fish  in  Indonesia  has  negative  impact  to  the  water  ecology,  such  as  declining  number  of  native  fish species. Handling the negative impacts of introducing fish can be minimized by reducing fertility rates through the use  of  plant  compound  extracts.  This  study  was  conducted  in  May  -  June  2016  which  aimed  to  assess  the effectiveness  of  the  papaya  seed  flour  ( Carica  papaya L)  for  the  reproductive  function  of  introduction  fish Oreochromis niloticus . The research design used in this study was completely randomized design, non-factorial with five treatments and three replications, namely A: control (without giving the flour), B: 40 mg, C: 50 mg, D: 60 mg, E: 70 mg of papaya seeds flour mixed with 100 g of artificial feed. The fish sample used were 45 mature tilapia fish, 4-5 months old with 200 g in weight for female and 250 g in weight for male. Parameters measured in this research were feed consumption level, fecundity, fertilization rate, hatching rate and sperm morphological structures. The results of this study indicated that the papaya seed flour gave the multiplier effect on the sperm abnormality and decreased the motility  level  of  sperm.  Statistical  analysis  showed  that  the  application  of  papaya  seed  flour  gave  significantly different  effect  (p<0.05)  between  treatments  on  percentage  of  fertilization  level  and  hatching  rate  parameter  but showed not significantly different on the survival rate parameter (p> 0.05). The lowest sperm motility rate was found in treatment E, which was 00.45 ".032 second -1 . The average egg number in this study ranged from 994.33 to 1,416 eggs, whereas the lowest fertilization level and the lowest hatching rate was in treatment E with the percentage  of 58.58% and 99.24%, respectively.
Keywords: Tilapia, sperm morphology, sperm motility, fertilization
_____________________________  Penulis korespondensi Alamat surel: khalil@unimal.ac.id

## Pendahuluan
Indonesia  merupakan  negara  dengan jumlah spesies ikan air tawar terbanyak ke tiga di dunia dengan total 1.253 spesies setelah Bra- zil  (3.456  spesies)  dan  China  (1.647  spesies). Selain itu, Indonesia juga menduduki posisi ke- 3 di dunia dalam jumlah spesies ikan air tawar endemik dengan total 130 spesies, setelah Brazil (395 spesies) dan Amerika Serikat (376 spesies) (Froese  &  Pauly  2018).  Spesies  ikan  air  tawar Indonesia saat ini mengalami ancaman penurun- an  populasi  akibat  dari  berbagai  aktivitas  yang disebabkan  baik  oleh  faktor  alamiah  maupun oleh  intervensi ekologis  manusia.  Faktor-faktor penyebab  menurunnya  populasi  ikan  air  tawar yaitu  perubahan  habitat,  eksploitasi  berlebih, introduksi ikan asing, pencemaran, penggunaan air berlebih untuk kegiatan manusia, pemanasan global (Muchlisin & Azizah 2009). Dari semua faktor ternyata  kepunahan ikan air tawar 35 % disebabkan oleh perubahan atau lenyapnya habi- tat,  31  %  disebabkan  oleh  penggunaan  sumber air  tidak  terkendali  serta  pencemaran  perairan,
30% disebabkan oleh introduksi ikan asing dan
4%  akibat  eksplotasi  berlebih  (Moyle  &  Leidy 1992).
Introduksi ikan asing dapat menimbulkan efek  negatif  yang  dapat  merugikan  perairan  di antaranya adalah penurunan kualitas lingkungan perairan,  gangguan  terhadap  komunitas  ikan asli, penurunan  kualitas  materi  genetik  melalui hibridisasi,  introduksi  atau  masuknya  penyakit dan  parasit,  menimbulkan  masalah  sosial ekonomi  bagi  masyarakat  sekitar  (Harrison  & Stiassny 1999, McGinnity et al. 2003, Naylor et al. 2004,  Lorenzen,  2005,  Wargasasmita  2005, Arthur et  al. 2010). Indonesia terdapat 20 jenis ikan introduksi (Froese & Pauly 2018).
Ikan  nila  telah  tersebar  luas  di  kawasan Asia  Tenggara  termasuk  Indonesia  dan  telah dibudidayakan  secara  luas  baik  melalui  sistem monokultur  atau  polikultur  dalam  kolam  dan tambak, maupun melalui sistem budidaya lainnya (Amilhat et  al. 2009).  Ikan  nila  ( O.  niloticus ) sebenarnya  bukan  ikan  asli  perairan  Indonesia, tetapi jenis ikan asing yang diintroduksi ke Indo- nesia  dalam  beberapa  tahap.    Ikan  nila  merupa- kan ikan asli benua Afrika, yang diintroduksi ke Indonesia  melalui  negara  Taiwan  pada  tahun 1969,  tepatnya  ke  Balai  Penelitian  Air  Tawar Bogor. Setelah beberapa waktu diteliti, ikan ini mulai  ditebar  ke  beberapa  daerah  (Salsabila et al. 2013).  Ikan  nila  telah  diintroduksi  ke  90 negara di dunia dan 15 negara di antaranya telah melaporkan  dampak  negatif  terhadap  ekologi perairan  (De  Silva et  al .  2004,  Attayde et  al.
2011, Teletchea & Fontaine 2012).
Ikan  nila  memiliki  kemampuan  untuk tumbuh lebih cepat serta memiliki batas toleran- si  lingkungan  yang  besar.  Selain  itu,  ikan  nila adalah  omnivora  yang  rakus  ( voracious )  dan mampu bersaing dengan jens ikan apapun dalam habitat  (McKaye et  al. 1995,  Courtenay  1997, Coward & Little 2001). Ikan nila mampu mela- kukan  proses  pemijahan  berulang  dalam  tempo singkat dan perkembangbiakan  yang  sangat ce- pat (Trewavas 1983, Ehrlich 1988). Kondisi ter- sebut  mengakibatkan  ikan  ini  tersebar  secara luas di alam bebas tanpa pengontrolan sehingga berakibat  negatif  pada  ikan  asli  (Arthur et  al. 2010).  Gangguan  ekologi  yang  timbul  akibat introduksi  ikan  nila  dalam  perairan  salah  satu- nya  yaitu  menurunnya  spesies  ikan  asli  ka- wasan.  Beberapa  kasus  gangguan  ekologis akibat  introduksi  ikan  nila  telah  dijumpai  di Afrika (cekungan Kafue dan Zambezi), Austra- lia,  Madagascar,  Nicaragua,  Filipina,  Mexico
dan Amerika Serikat ketika ikan nila yang pada awalnya diintroduksikan sebagai ikan budi daya kemudian  lepas  ke  alam,  telah  memengaruhi jumlah  ikan  asli  dan  menyebabkan  kepunahan beberapa  spesies  endemik  (Canonico et  al . 2005).  Ogutu-Ohwayo  (1990)  juga  melaporkan penurunan jumlah spesies ikan asli danau Victo- ria dan Kyoga di Afrika Timur akibat introduksi ikan  nila  jenis O.  niloticus .  Jenis  persaingan yang  terjadi  berupa  perebutan  sumber  makan dan  kawasan  hidup  sehingga  ikan  asli  menga- lami  kekurangan  makanan  dan  penyempitan habitat  hidup  yang  selanjutnya  mengakibatkan kematian dan kepunahannya.
Jika problematika di atas tidak diperhati- kan,  maka  kondisi  serupa  yaitu  punahnya  spe- sies asli perairan Indonesia akibat berkembang- nya  ikan  introduksi  juga  akan  sangat  mungkin terjadi.  Salah  satu  upaya  yang  dapat  dilakukan yaitu pengendalian ikan introduksi melalui me- tode  menghambat  fungsi  reproduksi  pada  ikan tersebut.  Upaya  ini  dapat  dilakukan  dengan pemberian unsur penghambat fungsi reproduksi dalam  pakan  (Khalil et  al. 2016).  Pemberian pakan tersebut dilakukan pada fase aktifitas budi daya ikan nila agar apabila ikan nila ini lepas ke alam,  maka  proses  reproduksinya  gagal  akibat kemandulan sehingga tidak menghasilkan ketu- runan  yang  dapat  menyebar  secara  meluas  di habitat perairan.
Salah  satu  bahan  alami  yang  diduga mampu  menghambat  fungsi  reproduksi  pada ikan  introduksi  adalah  biji  pepaya.  Biji  pepaya diketahui  mengandung  polisakarida,  vitamin, mineral,  enzim,  protein,  alkaloid,  glikosida,  le- mak,  lektin,  saponin,  flavonoid  dan  sterol.  Biji pepaya  mengandung  tanin,  saponin,  alkaloid dan  flavonoid  (Adeneye  &  Olagunju  2009). Setelah dilakukan analisis, biji pepaya mengan-
dung senyawa kimia alkaloid yang diduga dapat berefek  sitotoksit  terhadap  spermatogenik.  Biji pepaya diketahui memiliki aktivitas antifertilitas (Verma  &  Chinoy  2001).  Biji  pepaya  juga mengandung senyawa  metabolit primer  seperti: lemak  9,5%,  protein  8,5%,  karbohidrat  9,44%, abu 1,47%, dan air 71,8% (Yuniwati & Purwan- ti 2008). Penelitian ini bertujuan untuk  menen- tukan  efektivitas  tepung  biji  pepaya (Carica papaya L ) terhadap fungsi reproduksi ikan nila gift, Oreochromis niloticus .

## Bahan dan metode
Penelitian  ini  dilaksanakan  pada  bulan Mei  –  Juni  2016  di  Balai  Benih  Ikan  (BBI) Pante  Jaloh  Kecamatan  Sawang  Kabupaten Aceh  Utara  dan  pengamatan  mikroskopis  ter- hadap  morfologi  larva  nila  dilakukan  di  Labo- ratorium Kualitas Air dan Nutrisi Ikan, Fakultas Pertanian Universitas Malikussaleh.

## Penelitian pendahuluan
Penelitian  pendahuluan  ini  bertujuan untuk  menentukan  ambang  batas  dosis  tepung biji pepaya yang akan digunakan pada penelitian utama.
Penyiapan  wadah  dan  ikan  uji. Pada uji pendahuluan  ini  wadah  yang  digunakan  adalah bak beton berukuran 60 x 40 x 40 cm 3 sebanyak dua  buah.  Dalam  persiapan  wadah,  bak  dicuci terlebih  dahulu  sampai  bersih  dan  dimasukkan air  setinggi  30  cm,  kemudian  induk  ikan  nila jantan  dimasukkan  dalam  setiap  bak  sebanyak dua ekor
Penyiapan pakan uji . Biji pepaya terlebih dahulu dikeringkan dengan cara dijemur di sinar matahari  sampai  benar-benar  kering  ±  3  hari. Kemudian biji pepaya dihaluskan dengan peng- giling  (blender)  sampai  berbentuk  serbuk  atau
tepung,  lalu  disaring  menggunakan ayakan  sampai berbentuk serbuk  halus.  Setelah itu  tepung  biji  pepaya  dicampurkan  dengan dosis  yang  telah  ditentukan.  Pada  uji pendahuluan, dosis yg digunakan adalah 35 mg dalam  100  gram  pakan  buatan.  Pakan  buatan yang  sudah  dihancurkan  kemudian  diberikan CMC  ( carboxymethyl  cellulose )  sebanyak  1% dan  tambahkan  sedikit  air  pada  adonan  pakan yang  telah  dicampurkan.  Setelah  menjadi adonan  lalu  cetak  pakan  kembali  dengan menggunakan ce-takan ( pelleting ) dan
keringkan dalam oven pada suhu 90 o C selama
24 jam.
Prosedur pemeliharaan. Pakan diberikan dua kali sehari pada pagi (09:00) dan sore hari (16:30) dengan dosis 3% dari bobot induk ikan nila.  Hal  ini  dilakukan  supaya  pakan  mudah ditentukan dan efisien dalam  pemberian pakan. Pengelolaan kualitas air dilakukan pada bak uji melalui  penggantian  air  setiap  tiga  hari  sekali dengan  cara  mengeluarkan  air  sebanyak  50% dan memasukkan air bersih kembali.
Hasil  uji  pendahuluan. Hasil  uji  penda- huluan yang dilakukan selama dua minggu me- nunjukkan  bahwa  induk  ikan  nila  jantan  yang diberikan  pakan  campuran  tepung  biji  pepaya dapat  mengkonsumsi  pakan  dan  tidak  meme- ngaruhi  kondisi  fisiknya.  Biji  pepaya  yang  di- campurkan dengan pakan juga tidak menunjuk- kan adanya kandungan racun dan tidak menga- kibatkan kematian ikan nila tersebut. Kemudian, untuk mengamati fungsi reproduksi maka dilan- jutkan dengan melakukan penelitian utama.

## Penelitian utama
Metode  penelitian. Metode yang diguna- kan  dalam  penelitian  ini  yaitu  metode  eksperi- mental  dan  rancangan  penelitian  yang  diguna-
kan  dalam  penelitian  ini  ialah  rancangan  acak lengkap  non-faktorial  dengan  lima  perlakuan tiga ulangan. Perlakuan yang dilakukan sebagai berikut:
A. Kontrol (tanpa pemberian tepung)
B.  Pemberian  40  mg  tepung  biji pepaya  dalam
100 g pakan buatan
C.  Pemberian  50  mg  tepung  biji pepaya  dalam
100 g pakan buatan
D.  Pemberian  60  mg  tepung  biji pepaya  dalam
100 g pakan buatan
E.  Pemberian  70  mg  tepung  biji  pepaya  dalam 100 g pakan buatan
Prosedur  penelitian. Wadah  yang  digu- nakan  dalam  penelitian  ini  adalah  sterofoam yang berukuran 75  cm  x 35  cm  x 30 cm seba- nyak 15 buah untuk pemeliharaan induk jantan. Dalam persiapan wadah, bak dicuci dan disikat terlebih  dahulu  kemudian  dibilas  dan  dikering- kan  selama  satu  hari.  Setelah  itu,  bak  diisi  air dengan ketinggian 20 cm.
Induk  yang digunakan memiliki struktur morfologi  tubuh  lengkap  dan  memiliki  ukuran tubuh  seragam  serta  benar-benar  telah  matang gonad. Umur induk yang digunakan berkisar 4-5 bulan.  Bobot tubuh  induk  betina  200  g  dan  in- duk jantan 250 g.  Jumlah induk nila yang digu- nakan  sebanyak  45  ekor  dengan  perbandingan 2:1 ( 2 ekor induk jantan dan 1 ekor induk be- tina).  Dalam  proses  pemijahan  nantinya,  setiap wadah penelitian akan diisi oleh dua ekor induk jantan dan satu ekor induk betina.
Tahapan  awal  penelitian  adalah  proses aklimatisasi  yang  merupakan  proses  adaptasi induk  terhadap  lingkungan  baru.  Proses  akli- matisasi  dilakukan  selama  dua  hari  yang  dila- kukan  dalam  wadah  yang  telah  disediakan. Induk ikan nila tidak diberi pakan selama proses aklimatisasi berlangsung. Pada proses aklimati-
sasi, induk ikan nila jantan (bobot 250 g) dima- sukkan sebanyak dua ekor ke dalam wadah per- cobaan dan  wadah ditutup  menggunakan jaring hapa,  sedangkan  induk  ikan  nila  betina  (bobot 200  g)  dipelihara  dalam  kolam  yang  berbeda dengan ukuran 3 m x 1,5 m x 1 m. Pemeliharaan induk ikan nila dilakukan secara terpisah antara jantan  dan  betina.  Hal  ini  diterapkan  supaya tidak terjadinya pemijahan secara liar.
Setelah proses aklimatisasi selesai, maka dilanjutkan  dengan  fase  uji  utama.  Induk  ikan nila  jantan  yang  dipelihara  dalam  wadah  stero- foam  diberikan  pakan  yang  sudah  tercampur dengan  tepung  biji  pepaya  selama  21  hari  de- ngan  dosis  pemberian  pakan  sebanyak  3% dari bobot  tubuh  dengan  frekuensi  pemberian  dua kali  pagi  (09:00)  dan  sore  (16:30).  Induk  ikan nila betina (15 ekor) diberikan pakan apung bia- sa  dengan  pemberian  secara adlibitum dengan frekuensi  pemberian  dua  kali  yaitu  pagi  hari (09:00) dan sore hari (16:30).
Parameter uji
(1) daya konsumsi pakan: daya konsumsi adalah parameter yang diukur untuk melihat daya kesu- kaan ikan nila mengonsumsi pakan yang dicam- purkan  biji  pepaya.  Daya  konsumsi  pakan  diu- kur menggunakan stopwatch (dalam satuan me- nit  dan  detik)  dengan  melakukan  pengamatan dari  pertama  pemberian  pakan  sampai  pakan habis dikonsumsi oleh induk jantan.
(2) jumlah telur  (fekunditas): jumlah telur yang dihasilkan oleh induk ikan nila dihitung. Peng- hitungan telur dilakukan dengan cara membuka mulut ikan nila dan mengeluarkan seluruh telur yang ada dalam mulut kemudian telur dihitung,
(3) tingkat pembuahan telur: telur yang terbuahi dihitung  secara  kasat  mata.  Telur  terbuahi  ber- warna  kuning  cerah  sedangkan  yang  tidak  ter- buahi tampak pucat.
Persentase  pembuahan  dihitung  menggunakan rumus menurut Effendie (1979):
FR = JTB/JTT x 100
Keterangan FR: angka pembuahan (%), JTT: jumlah telur total keseluruhan (butir), JTB: jumlah telur yang dibuahi (butir).
(4)  tingkat  penetasan  telur : setelah telur  mene- tas, seluruh larva dihitung secara sample dengan menggunakan  sendok.  Persentase  penetasan telur  dihitung  menggunakan  rumus  Effendie (1979):
HR = JTM/JTB x 100
Keterangan: HR= angka penetasan (%), JTM= jumlah telur menetas (butir), JTB= jumlah telur yang dibuahi (butir).
( 5)  morfologi  sperma: parameter  morfologi sperma dilihat menggunakan mikroskop dengan pembesaran 16,4 (0,7-11,5x). Morfologi sperma dilihat  dari  bentuk  sperma  dan  abnormalitas sperma.  Spermatozoa  diteteskan  pada  cawan petri,  kemudian  diamati  untuk  mengetahui bentuk  dan  juga  melihat  apakah  ada  kelainan pada  morfologi  spermatozoa  tersebut,  dari  segi bentuk kepala dan ekor sperma,
(6) motilitas sperma: pengamatan mulai dilaku- kan setelah sperma diteteskan dalam cawan petri dengan  menghidupkan stopwatch saat  sperma diteteskan. Lama sperma bergerak (motil) hing- ga mati dicatat dan diberi angka motilitas,
(7)  abnormalitas  larva: abnormalitas larva dili- hat menggunakan mikroskup untuk mengetahui bagaimana kenormalan larva ikan nila terhadap pengaruh pemberian tepung biji pepaya,
(8) Sintasan  larva: Sintasan  larva  dihitung menggunakan rumus (Effendi 1979):
SR = N t /N o x 100 Keterangan:  SR=  Sintasan,  N t =  Jumlah  larva  pada akhir  pemeliharaan  (ekor),  N o =  Jumlah  larva  pada awal pemeliharaan (ekor).
Selama  masa  pemeliharan  ikan  uji,  pro- ses penyiponan serta penggantian air (sebanyak
25 % dari volume air) dilakukan setiap dua hari sekali.  Adapun  pengamatan  kualitas  air  seperti oksigen  terlarut,  suhu  dan  pH  dilakukan  setiap hari  dengan  menggunakan  alat portable  water
checker .

## Analisis data
Data yang diperoleh dibuat dalam bentuk tabel  dan  grafik,  selanjutnya  dianalisis  dengan uji F. Apabila di antara perlakuan menunjukkan pengaruh yang nyata dimana F hitung > F tabel , maka dilanjutkan dengan uji BNT/Beda Nyata Terke- cil.  Analisis  statistik  menggunakan  perangkat lunak SPSS versi 22.

## H asil

## Daya konsumsi pakan
Hasil  yang  diamati  selama  penelitian parameter daya konsumsi pakan memumjukkan perlakuan  A  (kontrol)  memiliki  tingkat  daya konsumsi  06’50”,  perlakuan  B  (40  mg)  memi- liki tingkat daya konsumsi 10'23”, perlakuan C (50  mg)  memiliki  tingkat  daya  konsumsi 11’05”,  perlakuan  D  (60  mg)  memiliki  tingkat daya konsumsi 14’37”, dan perlakuan E (70 mg) memiliki tingkat daya konsumsi 15’20”.

## Jumlah telur (fekunditas)
Jumlah  telur  yang  dihasilkan  oleh  induk ikan  nila  dapat  dilihat  pada  Tabel  1.  Jumlah telur paling banyak dijumpai pada perlakuan A dan  selanjutnya  disusul  oleh  perlakuan  C,  ke- mudian diikuti oleh perlakuan B dan D, dengan selanjutnya yang terakhir perlakuan E. Hasil uji F menunjukkan bahwa pemberian campuran biji pepaya  dalam  pakan  tidak  memberikan  penga- ruh yang nyata terhadap jumlah telur yang diha- silkan oleh induk ikan nila (P>0,05).

## Tingkat pembuahan (derajat pembuahan)
Angka pembuahan tertinggi  terdapat pa- da perlakuan A dan yang terendah terdapat pada perlakuan  E.  Perlakuan  B,  C,  dan  D  lebih rendah  daripada  perlakuan  A  dan  lebih  tinggi daripada perlakuan E (Gambar 1). Uji ANOVA menun-jukkan  bahwa  pencampuran  tepung  biji pepaya  dalam  pakan  ikan  uji  memberikan pengaruh  yang  sangat  nyata  (P<0,05)  terhadap persentase  pembuahan  telur  ikan  nila. Selanjutnya,  uji  lanjut  Tukey  menunjukkan bahwa  perlakuan  A  (kontrol)  berbeda  nyata terhadap perlakuan B (40 mg), C (50 mg), D (60 mg) dan E (70 mg).
Tabel 1. Jumlah total telur ikan nila ( Oreochromis niloticus ) Ulangan Perlakuan A B C D E 1 1228 1050 1144 935 898 2 1938 842 1243 1213 1102 3 1082 1323 887 972 983 Jumlah 4248 3215 3274 3120 2983 Rerata 1416,00 1071,67 1091,33 1040,00 994,33 Simpangan baku 457,92 241,23 183,75 150,96 102,47
Keterangan: A. Kontrol (tanpa pemberian tepung biji pepaya), B. Pemberian 40 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, C. Pemberian 50 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, D. Pemberian 60 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, E. Pemberian 70 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan.
Gambar  1.    Persentase  telur  terbuahi  ikan  nila  ( Oreochromis  niloticus ) . A.  Kontrol  (tanpa  pemberian tepung biji pepaya), B. Pemberian 40 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, C. Pemberian 50 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, D. Pemberian 60 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, E. Pemberian 70 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan.

## Tingkat penetasan telur
Angka penetasan telur ikan nila yang di- beri pakan campuran biji pepaya rata-rata pada taraf di atas 99 %. Angka penetasan telur yang tertinggi  terdapat  pada  perlakuan  A  disusul perla-kuan B dan C serta selanjutnya perlakuan D.  Angka  penetasan  terendah  dijumpai  pada per-lakuan E (Gambar 2).
Uji  ANOVA  menunjukkan  bahwa  pen- campuran tepung biji pepaya dalam pakan ikan memberikan pengaruh yang nyata (P<0,05) ter-
hadap  tingkat  penetasan  telur.  Selanjutnya,  uji lanjut  Tukey  menunjukkan  bahwa  perlakuan  A (kontrol) tidak berbeda nyata terhadap  perlaku- an  B  (40  mg)  dan  C  (50  mg),  namun  berbeda nyata terhadap perlakuan D (60 mg) dan E (70 mg).

## Morfologi sperma
Morfologi  sperma  ikan  nila  uji  dapat dilihat pada Tabel 2 dan Gambar 3.
96,80
83,44 77,27 67,32 58,58 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 A B C D E P er sent a se telur ter bu a hi (%) Perlakuan
Gambar  2.    Persentase penetasan  telur  ikan  nila  ( Oreochromis  niloticus ).  A.  Kontrol (tanpa  pemberian tepung biji pepaya), B. Pemberian 40 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, C. Pemberian  50  mg  tepung  biji  pepaya  dalam  100  g  pakan  buatan,  D.  Pemberian  60  mg tepung  biji  pepaya  dalam  100  g  pakan  buatan,  E.  Pemberian  70  mg  tepung  biji  pepaya dalam 100 g pakan buatan.
Tabel 2. Morfologi sperma ikan uji Perlakuan Ciri-ciri morfologi A. Kontrol (tanpa biji pepaya) Kepala dan ekor yang sempurna B, C, D, dan E (dengan asupan biji pepaya) Berekor pendek, kepala berganda, berekor ganda, ekor bercabang, ekor yang membengkok, kepala tidak berbentuk sempurna, ujung ekor keriting. (a) (b)
(c) (d) Gambar 3. Morfologi sperma ikan nila ( Oreochromis niloticus ). (a) normal, (b)  berekor ganda, (c) kepala berganda, (d) ujung ekor keriting
99,87 99,81
99,81 99,38 99,24 95 96 97 98 99 100 A B C D E P er sent a se telur m enet a s (%) Perlakuan

## Motilitas sperma
Hasil  pengamatan  menunjukkan  bahwa perlakuan A (kontrol) memiliki tingkat motilitas tertinggi yaitu 05’43,022” berbanding perlakuan lainnya.  Selanjutnya  diikuti  oleh  perlakuan  B (40  mg)  menunjukkan  dengan  waktu  motil 03’08.045”, kemudian disusul oleh perlakuan C (50  mg)  02’32,008”,  D  (60  mg)  dengan  waktu motil 02’19,056” dan yang terendah pada perla- kuan E (70 mg) dengan waktu 45,032”.

## Abnormalitas larva
Hasil  uji  abnormalitas  larva  ikan  nila pada  semua  perlakuan  menunjukkan  bahwa tidak  dijumpainya  abnormalitas  (Gambar  4). Larva  ikan  nila  pada  keseluruhan  perlakuan memiliki  morfologi  tubuh  yang  lengkap  (tidak cacat)  yaitu  sirip  punggung,  dada,  perut,  anus, ekor  dan  bentuk  tubuh,  baik  perlakuan  A (kontrol),  maupun  B,  C,  D,  dan  E  yang  diberi asupan tepung biji pepaya.

## Laju sintasan
Laju  sintasan  larva  ikan  nila  pada  pene- litian  ini  rata-rata  berada  di  atas  43%.  Angka laju sintasan tertinggi terdapat pada perlakuan A dengan nilai rata-rata 57,73% dan yang terendah terdapat pada perlakuan C dengan nilai rata-rata 43,51%. Nilai persentase laju sintasan perlakuan D adalah 45,60%,  E sebesar 48,84%, dan B se- besar  50,41%  (Gambar  5).  Uji    ANOVA  me- nunjukkan bahwa pencampuran biji pepaya da- am pakan ikan uji menunjukkan hasil tidak ber- pengaruh  nyata  (P>0,05)  terhadap  persentase laju sintasan ikan nila.

## Kualitas air
Parameter  kualitas  air  pada  setiap  perla- kuan tertera pada Tabel 3.
Gambar 4. Larva ikan nila normal ( Oreochromis niloticus ).
Gambar 5.  Persentase laju sintasan larva ikan nila ( Oreochromis niloticus ). A. Kontrol (tanpa pemberian tepung biji pepaya), B. Pemberian 40 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, C. Pemberian 50 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, D. Pemberian 60 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan, E. Pemberian 70 mg tepung biji pepaya dalam 100 g pakan buatan.
Tabel 3. Kisaran parameter kualitas air selama penelitian Parameter Perlakuan A B C D E Suhu ( o C) 26-28 26-28 26-28 26-28 26-28 pH 6,5-6,9 6,5-6,9 6,5-6,9 6,5-6,9 6,5-6,9 Oksigen terlarut (mg L -1 ) 4,8-5,3 4,8-5,3 4,8-5,3 4,8-5,3 4,8-5,3

## Pembahasan

## Daya konsumsi pakan
Daya  konsumsi  pakan  yang  dimakan oleh ikan nila jantan uji pada tiap perlakuan dan ulangan memiliki waktu yang berbeda terhadap daya makan. Daya konsumsi pakan paling baik terdapat pada perlakuan A (kontrol) dikarenakan pakan  yang  diberikan  merupakan  pakan  pelet komersial. Pakan pelet komersial biasa memiliki bau  yang  dapat  menarik  daya  makan  ikan  nila tersebut,  sedangkan  pakan  yang  sudah  dicam- purkan  dengan  tepung  biji  pepaya  mengubah rasa dan bau yang ada pada pakan. Selain itu biji pepaya  juga  memiliki  rasa  pahit,  kemungkinan rasa  pahit  ini  yang  membuat  ikan  uji  tersebut kurang  menyukai  pakan  yang  dicampurkan dengan  biji  pepaya.  Menurut  Thomas  (1989)
pepaya  mengandung zat  papain  yang  tinggi  se- hingga menjadikan rasanya pahit.

## Fekunditas
Jumlah  telur  yang  dihasilkan  pada  saat penelitian oleh semua induk ikan nila pada tiap perlakuan dan tiap ulangan hampir sama, terda- pat  sedikit  perbedaan  pada  perlakuan  A  (kon- trol)  jumlah  telur  yang  dihasilkan  mencapai rata-rata 1.416 butir (Tabel 1).
Pada  penelitian  ini  jumlah  total  telur yang dihasilkan berkisar di atas 842-1.243 butir, yang menunjukkan bahwa telur yang dihasilkan hampir seragam, baik ikan yang diberikan pakan campuran biji pepaya maupun yang tidak diberi- kan pakan campuran biji pepaya. Hasil yang sa- ma  juga  ditemukan  oleh  Hossan et  al. (2013)
yaitu dalam satu kali pemijahan induk ikan nila
57,76 50,41 43,51 45,60
48,84 0 10 20 30 40 50 60 70 A B C D E S in ta sa n ( %) Perlakuan
betina dengan berat 200 g mampu menghasilkan telur  sehingga  1.201±27.62  butir.  Menurut Rustadi  (1996),  satu  induk  ikan  nila  dalam pemijahan menghasilkan telur 114-1.325 butir.

## Tingkat pembuahan telur
Derajat  fertilitas  (pembuahan)  ikan  nila yang diberi asupan biji pepaya dalam pakan de- ngan  dosis  yang  berbeda  menunjukkan  penga- ruh  yang  sangat  nyata terhadap tingkat pembu- ahan ikan nila sehingga dapat mengurangi angka pembuahan telur.  Pada persentase angka fertili- tas  didapatkan  adanya  penurunan  seiring  kena- ikan  dosis  tepung  biji  pepaya  yang  diberikan. Pada perlakuan  kontrol  merupakan  angka  ferti- litas tertinggi, sedangkan pada perlakuan E jum- lah  angka  fertilitas  rendah  setelah  diberikan asupan biji pepaya (Gambar 1). Tingginya dosis asupan biji pepaya diperkirakan dapat menekan- kan  kerja  sperma  dalam  membuahi  telur  yang dikeluarkan oleh induk betina ikan nila. Hal ini menguatkan  pernyataan  Chinoy  (1985)  bahwa kandungan  dalam  biji  pepaya  dapat  digunakan sebagai  pengatur  fertilitas  karena  biji  pepaya tersebut memiliki efek membunuh sperma (sper- misidal) terhadap spermatozoa matang.
Biji pepaya mengandung bahan aktif ste- roid,  triterpenoid  dan  alkaloid  dapat  meyebab- kan  terganggunya  sekresi  FSH  ( Follicle  Stimu- lating Hormone ) dan LH ( Luteinizing Hormone ) sehingga  pada  akhirnya  akan  memberikan  te- kanan  pada  bagian  hipotalamus  dan  hipofisis. Terhambatnya  FSH  akan  mengganggu  proses mitosis  spermatogonia,  karena  FSH  sangat  di- perlukan dalam aktivitas spermatogonia (Puspi- tasari & Suhita 2014). Terhambatnya FSH juga akan  berpengaruh  terhadap  sel  sertoli.  Bila  sel sertoli  terganggu  maka  pengangkutan  glukosa sebagai  sumber  energi  terhambat  dan  sintesis
protein akan terhambat sehingga perkembangan jumlah sel spermatogonia terganggu.
Gangguan  pada  spermatogonia  akan mengakibatkan  gangguan  pada  perkembangan sel berikutnya yaitu spermatosit, spermatid, dan spermatozoa,  sehingga  spermatozoa  menurun dan  energinya  terganggu  (Satriyasa  2008). Hasanah  &  Sukarjati  (2016)  juga  menyatakan bahwa  penurunan  jumlah  sel  sertoli  dan  sel spermatogenik  diakibatkan  oleh  penurunan  ka- dar  hormon  reproduksi  sehingga  komponen  sel dalam tubulus mengalami degenerasi. Bila kea- daan  ini  berlanjut  akan  menyebabkan  proses spermatogenesis  terganggu  dan  akhirnya  sper- matozoa menurun.
Menurut  Francis et  al. (2002),  zat  aktif triterpenoid  (saponin)  yang  merupakan  turunan lipid  mampu  menghambat  pelepasan  LH  dan FSH.  Saponin  berpengaruh  negatif  terhadap proses reproduksi (seperti aborsi atau kematian) dan  menyebabkan  penghentian  proses  pema- tangan  gonad.  Saponin  berperan  besar  dalam pengeluaran  hormon luteinizing .  Senyawa  ste- roid  secara  langsung  menghambat  kerja  gen yang  bertanggungjawab  dalam  proses  steroido- genesis dan menekan perkembangan sel granula yang diatur oleh hormon perangsang folikel dal- am ovarium. Rusmiati (2007)  menyatakan bah- wa  penurunan  FSH  dan  LH  dapat  menekan pembentukan  testosteron  secara  langsung  pada sel leydig , sehingga terjadinya gangguan dalam keseimbangan  hormonal.  Gangguan  tersebut menyebabkan  penurunan  kualitas  spermatozoa yang  dihasilkannya  yaitu  tingkat  kemampuan hidup spermatozoa.
Pada perlakuan A dan B jumlah telur ter- buahi mencapai kisaran tinggi yaitu di atas 80%. Tingginya  jumlah  telur  terbuahi  disebabkan kualitas  dan  jumlah  sperma  yang  dikeluarkan
pada perlakuan B masih dalam kualitas baik un- tuk  dapat  membuahi  telur-telur  yang  dikeluar- kan. Dosis asupan biji pepaya pada perlakuan B diduga  belum  bekerja  maksimal  untuk  dapat menurunkan  tingkat  fertilitas  sehingga  telur yang  dikeluarkan  oleh  induk  betina  ikan  nila masih banyak terbuahi. Pada perlakuan A ting- kat pembuahan masih dalam katagori baik (nor- mal). Tingkat pembuahan ikan nila sudah dalam katagori  baik  jika  mencapai  pembuahan  80% (Nainggolan et  al. 2015).  Dari  perbandingan perlakuan  kontrol  tersebut  dapat  dinyatakan bahwa  asupan  biji  pepaya  untuk  menekankan tingkat  fertilitas  efektif  terhadap  menurunkan derajat pembuahan.

## Tingkat penetasan telur
Persentase penetasan telur  sangat berhu- bungan erat dengan tingkat pembuahan, apabila tingkat  perkembangan embrio pada pembuahan baik  maka  tingkat  penetasan  pun  akan  tinggi. Penetasan merupakan kemampuan embrio yang berkembang dalam telur untuk menetas menjadi larva.  Pada  penelitian  ini  persentase  penetasan telur ikan nila tertinggi terdapat pada perlakuan A (kontrol) dengan rata-rata 99,87 % dan yang paling  rendah  terdapat  pada  perlakuan  E  (70 mg)  yaitu  99,24  %.  Persentase  penetasan  telur penelitian  ini berada  pada  kisaran  diatas 99  %, baik pada perlakuan kontrol maupun pada perla- kuan yang diberi asupan biji pepaya.
Tingginya derajat penetasan pada semua perlakuan  diduga  pada  saat  telur  dibuahi  per- kembangan embrio berjalan sempurna tanpa ada gangguan  dari faktor  internal  seperti faktor  ge- netik, kualitas sperma yang membuahi sel telur dan kualitas embrio serta faktor eksternal seperti kualitas air media (Oyen et al . 1991, Masrizal & Efrizal 1997, Minggawati & Lukas 2012, Jalalu-
ddin 2014). Hasil penelitian  menunjukkan bah- wa kualitas air media seperti pH, oksigen terla- rut  dan  suhu  media  uji  memiliki  nilai  yang sesuai  untuk  perkembangan  larva  ikan  nila. Tammadusturi  &  Basuki  (2012)  menyatakan bahwa  ikan  nila  memiliki  tingkat  penetasan yang  baik  dengan  rata-rata  sebesar  88,70  - 89,24%.  Pada  penelitian  ini  persentase  pene- tasan telur tergolong baik yakni > 90%.

## Abnormalitas sperma
Hasil  pengamatan  terhadap  spermatozoa yang  dikeluarkan  oleh  induk  ikan  nila  jantan pada semua perlakuan terdapat sedikit perbeda- an pada perlakuan A (kontrol) dengan perlakuan yang diberikan asupan biji pepaya B (40 mg), C (50 mg), D (60 mg) dan E (70 mg). Pada perla- kuan A bentuk spermatozoa normal, sedangkan perlakuan yang diberikan campuran biji pepaya dalam pakan terdapat bentuk spermatozoa yang abnormal seperti ekor keriting, ekor  membeng- kok,  ekor  bercabang,  ekor  ganda,  ekor  pendek, kepala  berganda  dan  kepala  tidak  terbentuk sempurna.
Abnormalitas sperma ikan uji disebabkan adanya  gangguan  metabolisme  sperma  oleh  se- nyawa  aktif  yang  bersifat  sitotoksik  dalam  biji pepaya.  Menurut  Sukadana et  al. (2008),  biji pepaya  diketahui  mengandung  senyawa  meta- bolit  sekunder  golongan  triterpenoid  (saponin), flavonoid,  alkaloid,  dan  tanin.  Biji  pepaya mengandung  dua  zat  aktif  yaitu  golongan  ste- roid  dan  golongan  triterpenoid  yang  diperkira- kan  bersifat  antifertilitas  (Verma  &  Chinoy 2001, Satriyasa et al. 2010). Winarno & Sundari (1997)  menyatakan  bahwa  golongan  alkaloid dapat  memengaruhi  spermatogenesis.  Senyawa alkaloid  dapat  menekan  sekresi  hormon  repro- duksi  yang  diperlukan  untuk  berlangsungnya
spermatogenesis. Alkaloid merupakan salah satu golongan  senyawa  yang  terkandung  dalam  biji pepaya diduga bertanggung jawab atas aktivitas antifertilitas  dan  berpengaruh  terhadap  kadar hormon  testosterone  serta  bobot  organ  repro- duksi.  Mekanisme  yang  diduga  menyebabkan adanya  penurunan  kadar  hormon  testosterone adalah  alkaloid  bersifat  sitotoksik  sehingga menghambat perkembangan dan kerja sel leydig
dalam  menghasilkan  hormon  testosteron (Lohiya et al . 2002).
Abnormalitas sperma diduga terjadi pada proses  pematangan  sperma  ikan.  Pada  proses tersebut,  sperma  akan  membutuhkan  energi yang  diperoleh  melalui  pengubahan  senyawa protein  dengan  bantuan  enzim.  Senyawa  aktif dalam biji pepaya seperti tanin diduga berperan aktif  menghambat  proses  kerja  enzim  sehingga protein tidak dapat diubah menjadi energi untuk proses  pematangan  sperma.  Devi  &  Urooj (2010) menyatakan bahwa tanin adalah senyawa yang mampu mengikat protein dalam membran spermatozoa sehingga menyebabkan enzim tiro- sin dan proses fosforilasi dalam membran sper- matozoa  terganggu  yang  berakibat  terjadinya abnormalitas  morfologi  dan  viabilitas  sperma- tozoa.
Solihati et  al. (2013) menyatakan bahwa senyawa metabolit sekunder flavonoid juga ber- peran dalam menyebabkan abnormalitas primer karena senyawa flavonoid memiliki kemampuan dalam  merusak  tahapan  akhir  spermatogenesis. Hal  ini  menunjukkan  bahwa  biji  pepaya  telah memengaruhi  bentuk  morfologi  spermatozoa normal  menjadi  abnormal.  Menurut  Sujoko et al. (2009),  bentuk  morfologi  sel  spermatozoa berpengaruh  terhadap  pembuahan,  jika  jumlah abnormalitas  tinggi  maka  akan  menurunkan tingkat fertilitas.

## Motilitas sperma
Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa pakan  yang  diberikan  campuran  biji  pepaya memberikan  pengaruh  terhadap  aktivitas  per- gerakan  (motilitas)  sperma  setelah  dikeluarkan dari  organ  reproduksi  ikan  jantan.  Pada  perla- kuan E (dosis 70 mg) menunjukkan waktu mo- tilitas  dan  viabilitas  sperma  terendah  dengan waktu  45,032”  dibandingkan  dengan  perlakuan asupan biji pepaya lain, sedangkan perlakuan A (kontrol) menunjukkan waktu motilitas dan via- bilitas  sperma  tertinggi  (05’43,022”).  Motilitas berhubungan  erat  dengan  abnormalitas  sperma. Sperma  abnormal  akan  memiliki jumlah  energi lebih  sedikit  untuk  proses  motil.  Rendahnya motilitas dan viabilitas sperma pada perlakuan E diduga  akibat  pengaruh  zat  aktif  tanin  dan papain dalam biji pepaya.
Selain  itu,  senyawa  aktif  dalam  biji  pe- paya  diduga  juga  mengganggu  tahap  akhir proses  pelepasan  dan  perjalanan  sperma  untuk membuahi sel telur. Winarno & Sundari (1997) dan  Muslichah  &  Wiratmo  (2015)  menyatakan bahwa tanin adalah senyawa metabolit sekunder yang  mengganggu  proses  transportasi  sperma dengan  cara  menggumpalkan  sperma.  Sperma dapat  bergerak  karena  adanya  energi dari leher yang disalurkan ke bagian ekor yang diproduksi oleh mitokondria di bagian leher sperma. Didu- ga abnormalitas pada bagian leher spermatozoa menyebabkan  fungsi  mitokondria  dalam  meng- hasilkan energi tidak maksimal sehingga sperma tidak  dapat  mencapai  sel  telur  yang  akhirnya fertilitas tercegah. Selain tanin, senyawa papain yang  termasuk  kelompok  protease  yaitu  enzim yang dapat memutus ikatan polipeptida juga da- pat  memengaruhi  motilitas  spermatozoa  yaitu dengan  cara  merusak  komposisi cairan  epididi-
mis  dan  enzim  yang  dihasilkan  oleh  spermato- zoa  (Lohiya et  al. 2002,  Lohiya et  al. 2008, Nuraini et al. 2012).

## Abnormalitas larva
Hasil pengamatan terhadap abnormalitas larva ikan nila pada semua perlakuan dan ulang- an  menunjukkan  bahwa  pemberian  tepung  biji pepaya  tidak  berpengaruh  terhadap  morfologi larva  ikan  nila  baik  dari  segi  sirip,  kepala  dan bentuk  tubuh  ikan.  Secara  keseluruhan,  larva ikan nila yang hidup baik ikan kontrol maupun ikan dengan perlakuan tidak menunjukkan ada- nya cacat morfologis. Kondisi ini diduga karena spermatozoa  berperan  baik  dalam  proses  mem- buahi telur dan perkembangan embrio sehingga larva yang dihasilkan adalah normal. Spermato- zoa  yang  tidak  sempurna  atau  abnormal  akibat pengaruh senyawa penghambat dari biji pepaya diduga tidak berhasil membuahi sel telur.

## Sintasan larva
Persentase  laju  sintasan  larva  ikan  nila pada  penelitian  ini  tidak  beda  nyata.  Laju  sin- tasan tertinggi terdapat pada perlakuan A (kon- trol) dan B (40 mg) dengan persentase > 50 %, sedangkan perlakuan C (50 mg), D (60 mg) dan E (70 mg) adalah > 43 %. Tingginya dosis yang diberikan dalam penelitian ini terbukti tidak ber- pengaruh terhadap sintasan larva ikan nila. Hal ini dapat dilihat pada perlakuan E dengan dosis 70 mg tepung biji pepaya, larva ikan nila dapat tumbuh  secara  normal,  sedangkan  pada  perla- kuan C sintasan larva nila terendah.
Rendahnya  laju  sintasan  diduga  karena adanya  gangguan  faktor  luar  (eksternal)  yang memengaruhi aspek fisiologis larva. Laju sintas- an  ikan  sangat  dipengaruhi  oleh  keadaan  ling- kungan karena lingkungan yang baik sangat di-
perlukan  untuk  pertumbuhan  dan  sintasannya (Brummet 1995, El-Sayed et al. 1996, Huang & Chiu 1997, El-Sayed 2006). Tingginya kematian yang terjadi pada masa pemeliharaan larva didu- ga dipengaruhi oleh beberapa faktor diantaranya yaitu ruang gerak larva yang sempit oleh jumlah biota yang banyak (Kebus et al. 1992, Barcellos
et al. 1999), laju pertumbuhan larva yang cepat sehingga  akan  mengakibatkan  pasokan  oksigen tidak  mencukupi  yang  diikuti  oleh  penurunan kualitas  air  (Barton  &  Iwama  1991,  Bonga 1997,  Azaza et  al. 2008)  serta  meningkatnya kompetisi  dalam  memperoleh  makanan (Fernandes & Volvato 1993) yang memberikan tekanan fisiologis terhadap ikan berupa stres.
Dampak stres mengakibatkan daya tahan tubuh  ikan  menurun  sehingga  terjadi kematian. Menurut  Effendie  (1997),  pada  populasi  ikan terdapat  kecenderungan  bahwa  ikan  yang  lebih tua  tingkat  mortalitasnya  lebih  kecil  dibanding ikan  yang  lebih  muda.  Menurut  Bolivar et  al.
(2008)  tingkat  kelangsungan  hidup  benih  ikan nila pada kolam pemeliharaan  memiliki tingkat kelangsungan  hidup  antara  49,52-73,35%.  Ke- mudian  Yustysi et  al .  (2016)  juga  menyatakan bahwa  nilai  sintasan  ikan  nila  pada  lingkungan budi  daya  umumnya  berkisar  67,35-68,21%. Effendie  (1997)  menyatakan  bahwa  nilai  sin- tasan di atas 50% digolongkan baik, antara 30- 50%  digolongkan  sedang,  dan  dibawah  30% rendah.

## Kualitas air
Kualitas  air  merupakan  salah  satu  para- meter  yang  dapat  memengaruhi  pertumbuhan dan sintasan organisme akuatik. Dalam keadaan kualitas air yang tidak optimum, ikan akan mu- dah  stres  dan  terserang  penyakit;  bahkan  pada kisaran  nilai  tertentu,  dapat  menyebabkan  ke-
matian.  Kisaran  suhu  selama  penelitian  masih dalam  batas  kelayakan  bagi  pemeliharaan  ikan nila,  yaitu  26-28 0 C.  Parameter  pH  air  selama penelitian  adalah  6,5  -6,9  dan  cenderung  stabil hingga  akhir  penelitian.  Popma  &  Masser (1999)  menyatakan  bahwa  umumnya  ikan  nila dapat hidup pada kisaran pH 5-10, tetapi untuk pertumbuhan terbaik yaitu pada kisaran pH 6-9. Hal  ini  menunjukkan  pH  yang  terukur  selama penelitian masih berada dalam kondisi optimum.
Ikan  nila  dikenal  tahan  terhadap  kadar oksigen  terlarut  yang  rendah.  Menurut  Tran- Duy et al . (2008) oksigen terlarut minimum un- tuk tilapia sebesar 2,9 mg L -1 . Hasil yang diper- oleh selama penelitian menunjukkan konsentrasi oksigen  terlarut  berkisar  antara  4,8-5,3  mg  L -1 .
Kadar  oksigen  terlarut  selama  penelitian  selalu dijaga dalam keadaan optimum dengan bantuan aerasi.  Dengan  demikian,  konsentrasi  kualitas air  selama  penelitian  masih  dalam  batas  kela- yakan bagi pemeliharaan ikan nila.

## Simpulan
Tepung  biji  pepaya  yang  dicampurkan dalam pakan berpengaruh terhadap bentuk mor- fologi  sperma  serta  abnormalitas  pada  sperma ikan  nila Oreochromis  niloticus .  Tepung  biji pepaya  juga  memengaruhi  proses  motilitas sperma  dan  proses  pembuahan  telur  ikan  nila. Namun, senyawa aktif dalam tepung biji pepaya tidak  berpengaruh  terhadap  morfologi  dan  ab- normalitas larva ikan nila yang dihasilkan.

## Persantunan
Peneliti  mengucapkan  terima  kasih  atas bantuan teknis dan penyediaan sarana penelitian kepada Balai Benih Ikan Pante Jaloh Kecamatan Sawang  Kabupaten  Aceh  Utara.  Penulis  juga menghaturkan  terima  kasih  kepada  Laborato-
rium Akuakultur Fakultas Pertanian Universitas Malikussaleh  atas  penyediaan  sarana  analisis mikroskopis.

## Daftar pustaka
Adeneye  AA,  Olagunju  JA.  2009.  Preliminary hypoglycemic  and  hypolipidemic  activi- ties of the aqueous seed extract of Carica papaya
Linn in Wistar rats. Biology  and Medicine , 1(1): 1-10.
Amilhat E,  Lorenzen K, Morales EJ, Yakupiti- yage  A,  Little  DC.  2009.  Fisheries production  in  Southeast  Asian  farmer managed  aquatic  systems  (FMAS).  II. Diversity  of  aquatic  resources  and management  impacts  on  catch  rates.
Aquaculture, 298 (3-4): 219-226.
Arthur  RI,  Lorenzen  K,  Homekingkeo  P, Sidavong K, Sengvilaikham B, Garaway CJ.  2010.  Assessing  impacts  of  intro- duced aquaculture species on native fish communities:  Nile  tilapia  and  major carps  in  SE  Asian  freshwaters.
Aquaculture , 299(1-4): 81–88.
Attayde  JL,  Brasil  J,  Menescal  RA.  2011.  Im- pacts  of  introducing  Nile  tilapia  on  the fisheries of a tropical reservoir in North- eastern  Brazil. Fisheries  Management and Ecology , 18(6): 437–443.
Azaza,  MS,  Dhraïef  MN,  Kraïem  MM.  2008. Effects  of  water  temperature  on  growth and  sex  ratio  of  juvenile  Nile  tilapia Oreochromis  niloticus (Linnaeus) reared in geothermal waters in southern Tunisia.
Journal  of  Thermal  Biology ,  33(2):  98- 105.
Barcellos LJG, Nicolaiewsky S, de Souza SMG, Lulhier F. 1999. The effects of stocking density  and  social  interaction  on  acute stress response in Nile tilapia Oreochro- mis  niloticus (L.)  fingerlings. Aquacul- ture Research
, 30 (11-12): 887-892.
Barton  BA,  Iwama  GK.  1991.  Physiological changes in fish from stress in aquaculture with  emphasis  on  the  response  and  ef- fects  of  corticosteroids. Annual  Reviews of Fish Diseases , l: 3-26.
Bolivar RB, Bolivar HL, Sayco RMV, Jimenez ET,  Argueza  RB,  Dadag  LB,  Taduan AG, Borski RJ. 2008. Growth evaluation, sex conversion rate and percent Survival
of  nile  tilapia  ( Oreochromis  niloticus ) fingerlings  in  earthen  ponds. In: Elgho- bashy H, Fitzsimmons K , Diab AS (ed.). Proceeding  on 8th  International  Sym- posium  on  Tilapia  in  Aquaculture ,  Oc- tober 12-14, 2008. Cairo, Egypt. 1436 p.
Bonga SEW. 1997. The stress response in fish.
Physiological Reviews , 77(3): 591-625.
Brummett  RE.  1995.  Environmental  regulation of sexual maturation and reproduction in tilapia. Reviews  in  Fisheries  Science , 3(3): 231-248.
Canonico  GC,  Arthington  A,  McCrary  JK,
Thieme  ML.  2005.  The  effects  of  intro- duced  tilapias  on  native  biodiversity.
Aquatic Conservation:Marine and Freshwater Ecosystems , 15(5): 463–483.
Chinoy  NJ.  1985.  The  reversible  antifertility effect of extract of Carica  papaya seeds on  male  rats. In : Kumar  ATC,  Waites GMH  (ed.). Methods  for  the  Regulation of Male Fertility. Proceeding of Sympho- sium  organised  by  the Indian  Council  of Medical  Research  and  WHO  at  the  Ins- titute  for  Research  in  Reproduction . Published  by  India  Council  of  Medical Reseach. New Delhi. 95 p.
Courtenay  WR.  1997.  Tilapias  as  non-indige- nous  species  in  the  Americas:  environ- mental,  regulatory  and  legal  issues. In : Costa-Pierce  BA,  Rakocy  JE  (ed.).
Tilapia  Aquaculture  in  the  Americas. World  Aquaculture  Society : Volume  I, Baton Rouge, LA; pp. 18–33.
Coward K, Little D. 2001. Culture of the ‘aqua- tic chicken’: present concerns and future prospects. Biologist , 48(1): 12–16. de Silva SS, Subasinghe RP, Bartley DM, Low- ther A. 2004. Tilapias as alien aquatics in Asia  and  the  Pacific:  A  Review. FAO Fisheries Technical Paper
, 453: 65 pp.
Devi  V,  Urooj  A.  2010.  Nutrient  profile  and antioxidant  components  of Costus
Speciosus Sm.  and Costus  igneus Nak. Indian  Journal  of  Natural  Products  and Resources, 1(1): 116-118.
Effendie  MI.  1979. Metode  Biologi  Perikanan . Yayasan Dewi Sri, Bogor. 112 hlm.
Effendie MI. 1997. Biologi Perikanan . Yayasan Pustaka Nusatama, Yogyakarta. 163 hlm.
Ehrlich  PR.  1988.  Attributes  of  invaders  and invading processes. In: Drake J, di Castri F,  Groves  R,  Kruger  F,  Mooney  H, Rejmanek A, Williamson M (ed.). Biolo- gical  Invasions:  A  Global  Perspective . John  Wiley:  Chichester,  UK;  pp.  315– 328
El-Sayed AFM, El-Ghobashy A, Al-Amoudi M. 1996.  Effects  of  pond  depth  and  water temperature on the growth, mortality and body  composition  of  Nile  tilapia, Oreo- chromis  niloticus (L.). Aquaculture Research , 27(9): 681–687.
El-Sayed  AFM.  2006 .  Tilapia  Culture .  CABI Publishing, CABI International, Willing- ford, Oxfordshire, United Kingdom. 277
p.
Fernandes MDO, Volpato GL. 1993. Heteroge- neous  growth  in  the  Nile  tilapia:  Social stress  and  carbohydrate  metabolism.
Physiology & Behavior , 54(2): 319-323.
Francis  G,  Kerem  Z,  Harinder  PS,  Makkar, Becker K. 2002. The biological action of saponins  in  animal  system:  review.
British  Journal  of  Nutrition, 88(6): 587-
605.
Froese R, Pauly D. 2018. Fishbase. World Wide Web electronic publications : www.fishbase.org, version (06/2018).
Harrison  IJ,  Stiassny  MLJ.  1999.  The  quiet crisis: a  preliminary  listing  of  the  fresh- water  fishes of  theworld  that  are  extinct or ‘missing in action’. In : MacPhee RDE, Suess  HD  (ed.). Extinctions  in  Near Time .  Kluwer  Academic  Publishers, NewYork, pp. 271–331.
Hasanah  W,  Sukarjati.  2016.  Pengaruh  pembe- rian  ekstrak  biji pepaya  ( Carica  Papaya L. ) dan ekstrak daun mimba ( Azadirachta Indica A. Juss ) dan campuran ekstrak biji pepaya dan ekstrak daun mimba terhadap kualitas  spermatzoa  mencit  ( Mus Musculus ). Wahana , 67(2): 59-69.
Hossan  MS,  Ulka  SB,  Motin  MA,  Tarafder MAK, Sukhan ZP, Rashid H. 2013. Egg and  fry  production  performance  of  fe- male tilapia related to fluctuating tempe- rature  and  size  variation. Proceeding  on 4th  the  International  Conference  on Environmental  Aspects  of  Bangladesh . Fukuoka,  Japan,  August  24-26,  2013. The University of Kitakyushu. 140 p.
Huang WB, Chiu TS. 1997. Effects of stocking density  on  survival,  growth,  size  varia- tion, and production of Tilapia fry. Aqua-
culture Research , 28(3): 165–173.
Jalaluddin.  2014.  Pengaruh  salinitas  terhadap fekunditas  fungsional,  daya  tetas  telur dan  benih  ikan  nila  salin  ( Oreochromis niloticus Linn). Jurnal  Manajemen Perikanan dan Kelautan , 1(2): 17-31.
Kebus  MJ,  Collins  MT,  Brownfield  MS, Amundson  CH,  Kayes  TB,  Malison  JA. 1992. Effects of rearing density on stress response  and  growth  of  rainbow  trout.
Journal  of  Aquatic  Animal  Health , 4(1): 1-6.
Khalil  M,  Aida  N,  Adhar  S,  Hartami  P.  2016. Pencampuran  tepung  daun  gandarusa ( Justicia gendarussa ) dalam pakan untuk mengurangi fertilitas ikan nila gift, Oreo- chromis sp. Jurnal  Iktiologi  Indonesia , 16(1): 11-23.
Lohiya  NK,  Manivannan  B,  Goyal  S,  Ansari AS.  2008.    Sperm  motility  inhibitory effect  of  the  benzene  chromatographic fraction of the chloroform extract of the seeds  of Carica  papaya in  langur  mon- key, Presbytis  entellus  entellus . Asian Journal of Andrology , 10(2): 298-306.
Lohiya,  NK,  Manivannan  B,  Mishra,  PK, Pathak  N,  Sriram  S,  Bhande  SS, Panneerdoss S. 2002. Chloroform extract of Carica  papaya seeds  induces  long- term  reversible  azoospermia  in  Langur monkey. Asian  Journal  of  Andrology , 4(1): 17-26.
Lorenzen  K.  2005.  Population  dynamics  and potential of fisheries stock enhancement: practical theory for assessment and poli- cy  analysis .  Philosophical  Transactions of  the  Royal  Society  B:  Biological Sciences , 360(1453): 171–189.
Masrizal, Efrizal. 1997. Pengaruh rasio pengen- ceran  mani  terhadap  fertilisasi  sperma dan  daya  tetas  telur  ikan  mas  ( Cyprinus carpio L). Fisheries  Journal  Garing, 6: 1-9.
McGinnity P, Prodöhl P, Ferguson A, Hynes R, Maoiléidigh  ÓN,  Baker  N,  Cotter  D, O'Hea B, Cooke D, Rogan G, Taggart J, Cross  T.  2003.  Fitness  reduction  and potential  extinction  of  wild  populations of  Atlantic  salmon Salmo  salar ,  as  a result  of  interactions  with  escaped  farm
salmon. Proceedings  of  the  Royal  Society  , Series  B:  Biological  Sciences ,  270(1532):
2443–2450.
McKaye KR, Ryan JD, Stauffer JR, Perez LJL,
Vega GI, van den Berghe EP. 1995. Afri- can tilapia in Lake Nicaragua: ecosystem in transition. Bioscience , 45(6): 406–411.
Minggawati  I,  Lukas.  2012.  Studi  kualitas  air untuk  budidaya  ikan  karamba  di  Sungai Kahayan. Jurnal  Media  Sains , 4(1): 87– 91.
Moyle  PB,  Leidy  RA.  1992.  Loss  of  biodiver- sity in aquatic ecosystem: evidence from fish faunas. In : Fiedler PL, Jain SK (ed.). Conservation  Biology:  the  Theory  and Practice  of  Nature  Conservation,  Pre- servation  and  Management. Chapman and Hall, New York. pp. 127-169
Muchlisin  ZA,  Azizah  MNS.  2009.  Diversity and  distribution  of  freshwater  fishes  in Aceh Water. Northen-Sumatera, Indone- sia. International  Journal  of  Zoological Research , 5(2):62-79.
Muslichah S, Wiratmo. 2015. Efek antifertilitas fraksi n -heksana,  fraksi  kloroform,  dan fraksi metanol biji pepaya ( Carica papa- ya L.) terhadap tikus jantan Galur Wistar.
Jurnal Farmasi Sains dan Terapan , 2(2):
10-14.
Nainggolan R, Revol D, Monijung, Mingkid W. 2015. Penambahan madu dalam pengen- ceran  sperma  untuk  motilitas  spermato- zoa,  fertilisasi  dan  daya  tetas  telur  ikan nila  ( Oreochromis  niloticus ). Ejournal Budidaya Perairan , 3(1): 131-140.
Naylor  R,  Hindar  K,  Fleming  I,  Goldburg  R,
Williams S, Volpe J, Whoriskey F, Eagle J,  Kelso  D,  Mangel  M.  2004.  Fugitive salmon:  assessing  the  risks  of  escaped fish from net-pen aquaculture. Bioscience
, 55(5): 427–437.
Nuraini T, Kusmana D, Afifah E. 2012. Penyun- tikan ekstrak biji Carica papaya L. varie- tas  Cibinong  pada Macaca  vascicularis L.  dan  kualitas  spermatozoa  serta  hor- mon  testosteron. Makara  Kesehatan , 16(1): 9-16.
Ogutu-Ohwayo  R.  1990.  The  decline  of  the native fishes of lakes Victoria and Kyoga (East  Africa)  and  the  impact  of  intro- duced species, especially the Nile perch,
Lates  niloticus ,  and  the  Nile  tilapia,
Oreochromis  niloticus . Environmental
Biology of Fishes , 27(2): 81–96.
Oyen FGF, Camps LECMN, Bonga WSE. 1991. Effects  of  acid  stress  on  the  embryonic development  of  the  common  carp ( Cyprinus  carpio ). Aquatic  Toxicology , 19(1): 1–12.
Popma  T,  Masser  M.  1999. Tilapia  life  history and  biology.  Southern  Regional  Aqua- culture Center Publication No. 283.
Puspitasari  Y,  Suhita  BM.  2014.  Pemberian ekstrak  ethanol  biji  papaya  ( Carica papaya )  sebagai  bahan  antifertilitas alternatif  pada  tikus  betina  ( Rattus novergicus ) terhadap jumlah dan kualitas sel telur . Veterinaria Medika , 7(1): 1-6.
Rusmiati.  2007.  Pengaruh  ekstrak  kayu  secang ( Caesalpinia  sappan L)  terhadap  viabi- litas  spermatozoa  mancit  jantan (Mus musculus L). Biosciantiae , 4(2): 63-70.
Rustadi. 1996. Pengambilan telur dari induk nila merah (Oreochromis sp ) pengaruhnya terhadap  kecepatan  berpijah  kembali.
Jurnal Perikanan , 1(1): 27-34
Salsabila A, Basuki F, Hastuti S. 2013. Perfor- ma  pertumbuhan  strain  ikan  nila  ( Oreo- chromis  niloticus )  yang  berbeda  pada sistem  budidaya  minapadi. Journal  of Aquaculture  Management  and  Techno- logy , 2(4): 1-6
Satriyasa  BK,  Pangkahila,  Wimpie  I.  2010. Fraksi heksan dan fraksi metanol ekstrak biji  pepaya  muda  menghambat  sperma- togonia  mencit (Mus  musculus) jantan. Jurnal Veteriner , 11(1): 36-40.
Satriyasa  BK.  2008.  Fraksi  heksan  ekstrak  biji pepaya muda dapat  menghambat proses spermatogenesis  mencit  jantan  lebih besar daripada fraksi metanol ekstrak biji papaya  muda. Indonesian  Journal  of
Biomedical Science , 2(2): 1-12
Solihati N, Purwantara B, Supriatna I, Winarto A.  2013.  Perkembangan  sel-sel  sperma- togenik  dan  kualitas  sperma  pasca  pem- berian  ekstrak  pegagan  (C entella  asi- atica ). Jurnal Ilmu Ternak dan Veteriner , 18(3): 192–201.
Sujoko H, Setiadi MA, Boediono A. 2009. Se- leksi  spermatozoa  domba  Garut  dengan metode  sentrifugasi  Gradien  Densitas
Percoll. Jurnal  Veteriner ,  10(3):  125- 132.
Sukadana  IM,  Santi  SR,  Juliariti  NK.  2008. Aktivitas  antibakteri  senyawa  golongan triterpenoid  dari  biji  pepaya  ( Cacica papaya L) . Jurnal Kimia , 2(1): 15-18.
Tammadusturi,  Basuki.  2012.  Analisis  karakter reproduksi  ikan  nila  kunti (Oreochomis niloticus) F4 dan F5. Journal of Aquacul- ture  Management  and  Technology , 1(1):
180-192.
Teletchea  F,  Fontaine  P.  2012.  Levels  of domestication  in  fish:  implications  for the  sustainable  future  of  aquaculture.
Fish and Fisheries , 15(2): 181–195.
Thomas  ANS.  1989. Tanaman  Obat  Tradisi- onal . Kanisius. Yogyakarta. 130 hlm.
Tran-Duy  A,  Schrama  JW,  van  Dam  AA, Verreth JAJ. 2008. Effect of oxygen con- centration and body weight on maximum feed  intake,  growth  and  hematological parameters  of  nile  tilapia, Oreochromis niloticus . Aquaculture ,  275(1-4):  152- 162.
Trewavas  E.  1983. Tilapiine  Fishes  of  the Genera  Sarotherodon,  Oreochromis  and Danakilia .  British  Museum  of  Natural History: London. 583 p.
Verma RJ, Chinoy NG. 2001. Effect of papaya seed  extract  on  microenvironment  of cauda  epididymis. Asian  Journal  of Andrology , 3(2):143-146.
Wargasasmita  S.  2005.  Ancaman  invasi  ikan asing terhadap keanekaragaman ikan asli.
Jurnal Iktiologi Indonesia , 5(1): 5-10.
Winarno  MW,  Sundari  D.  1997.  Informasi  ta- naman  obat  untuk  kontrasepsi  tradisi- onal. Cermin  Dunia  Kedokteran ,  120: 25-29.
Yuniwati,  Purwanti  A.  2008.  Optimasi  kondisi proses  ekstraksi  minyak  biji  pepaya.
Teknologi Technoscientia , 1(1): 74-84.
Yustysi  DP,  Basuki  F,  Susilowati  T.  2016. Analisis  karakter  reproduksi  dan  perfor- ma benih pendederan ikan nila pandu F6 dengan  ikan  nila  nilasa  ( Oreochromis niloticus )  secara  resiprokal . Journal  of Aquaculture  Management  and  Techno- logy , 5(1): 116-123.