Widiastuti, R., Widodo, M, S., Faqih, A, R. (2022) Respon Hormon Stress dan Glukosa Darah Benih Ikan  Maru (Channa  Marulioides) terhadap  Suhu  Berbeda, Syntax  Idea, 4 (5) , https://doi.org/ 10.36418/syntax-idea.v4i5.1839 E-ISSN: 2684-883X Published by: Ridwan Institute
Syntax Idea: p–ISSN: 2684-6853 e-ISSN: 2684-883X Vol.4, No.5, Mei 2022

## RESPON  HORMON  STRESS  DAN  GLUKOSA  DARAH  BENIH  IKAN  MARU (Channa marulioides) TERHADAP SUHU BERBEDA

## Rohmah Widiastuti, Maheno Sri Widodo, Abd. Rahem Faqih
PDD Politeknik Negeri Pontianak Di Kab. Kapuas Hulu, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Pascasarjana universitas Brawijaya Malang Email: rohmahwidiastuti13@gmail.com, lynxpardel@yahoo.co.id, ar.faqih@ub.ac.id

## Abstrak
Ikan maru merupakan salah satu ikan hias karnivor yang bernilai tinggi, mempunyai dua  varian  warna  yaitu  jenis  yellow  maru  dan  red  maru  serta  menampilkan  corak yang  beragam  pada  size  yang  berbeda.  Dengan  adanya  pertimbangan  demikian, tujuan  dari  penelitian  ini  ialah  bagian  tahapan  yang  harus  dilaksanakan  apabila pelaku  budidaya  ingin  membuat  langkah  untuk  domestikasi.  Penelitian  ini menyatakan  bahwa  tiap  tingkatan  suhu  sangat  mempengaruhi  kadar  glukosa  darah ikan  yang  mengindikasikan  bahwa  ikan  tersebut  mengalami  stress,  biasanya  stress pada  ikan  dapat  diakibatkan  perubahan  lingkungan  yaitu  suhu  atau  akibat  beberapa perlakuan  misalnya  akibat  pengangkutan  atau  transportasi.  Glukosa  darah  pasca stress  memperlihatkan  fluktuasi  menurun,  tinggi  dan  menurun  kembali  ini  dapat dilihat  pada  suhu  29  ºC  menghasilkan  115,2  mg/dL  –  117,8  mg/dL  dapat menurunkan  glukosa  darah.  Kortisol juga  dapat  berdifusi  keluar  dari  ikan,  terutama melintasi insang, dengan difusi pasif bentuk bebas.
Kata kunci : channa; respon fisiologis; kortisol; glukagon; glukosa darah; suhu

## Abstract
Maru fish is one of the carnivorous ornamental fish that are of high value, have two color  variants,  namely  the  yellow  maru  and  red  maru  types  and  display  various patterns at different sizes. With this consideration, the purpose of this research is the part of the stage that must be carried out if the cultivation actor wants to make steps for  domestication. This  study  states  that  each  temperature  level  greatly  affects  the blood  glucose  levels  of  fish  which  indicates  that  the  fish  is  experiencing  stress, usually stress in fish can be caused by environmental changes, namely temperature or due to some treatment such as transportation or transportation. Post-stress blood glucose  shows  fluctuations  decreased,  high  and  decreased  again  can  be  seen  at  a temperature  of  29ºC  produces  115.2  mg  /  dL  –  117.8  mg  /  dL  can  lower  blood glucose.  Cortisol  can  also  diffuse  out  of  fish,  especially  across  the  gills,  with  free- form passive diffusion.
Keywords: Channa; physiological response; cortisol; glucagon; glucose; themperature
Received: 2022-04-22; Accepted: 2022-05-05; Published: 2022-05-11

## Pendahuluan
Ikan  dari  golongan  channa  ini  merupakan  ikan  yang  banyak  dijumpai  diwilayah genangan air, seperti danau. Dikarenakan dari bentuk dan rupanya seperti ular. Ikan ini juga  dijuluki  snakehead.  Ikan  dari  keluarga  channa  tergolong  predator  di  alam  dan beragam  jenisnya,  dari  yang  untuk  di  konsumsi  sampai  untuk  dijadikan  ikan  hias. Penggemar  ikan  hias  mengenalnya  dengan  sebutan  ikan  maru,  yellow  maru  atau  red maru.  Dengan  kisaran  harga  yang  beragam  tergantung  size  dan  corak  warna.  Respon Stres  merupakan  sejumlah  respon  fisiologis  dari  tubuh  yang  terjadi  pada  saat  hewan berusaha  mempertahankan  homeostatis  pada  tiap  tuntutan  yang  dikenakan  padanya Stres yang terjadi pada ikan salah satunya disebabkan karena kondisi lingkungan yang buruk (Susanto,  2014). Dalam  kondisi  stress,  ikan  mengalami  respon  primer  dan sekunder.  Respon  primer  yaitu  melepas  hormone  kortisol  dan  katekolamin  yang mengeluarkan hormone glukagon. Kadar glukosa darah ikan yang normal mengandung 40-90  mg/dl,  kandungan  glukosa  darah  tersebut  hampir  sama  dengan  glukosa  darah pada  manusia  yaitu  70-110  mg/dl.  Pemeliharaan  terhadap  suhu  berbeda  ini ialah  salah satu tahapan yang dapat dilakukan jika akan melakukan domestikasi ikan liar. Ikan liar ketika  dibawa  kedalam  lingkungan  akuakultur  yang  sudah  tersetting  pasti  akan  stress sebagai  respon  fisiologis  pada  ikan.  Terdapat  penelitian  sebelumnya  dengan  hanya mengamati  glukosa  darah,  katekolamin,  dan  gambaran  darah  namun  pada  jenis  ikan berbeda dan ukuran ikan yang berbeda namun dengan parameter yang berbeda. Dengan kata  lain,  belum  terdapat  penelitian  mengenai  analisis  respon  hormon  stress  yaitu kortisol  dan  glukagon  serta  glukosa  darah  terhadap  suhu  berbeda  pada  jenis  spesies Channa  ini.  Diharapkan  dengan  adanya  penelitian  ini  guna  untuk  budidaya  ikan  yang berkelanjutan bahwa jika pelaku budidaya akan mendomestikasikan ikan liar, haruslah melaksanakan salah satu tahapan ini, kemudian dapat diaplikasikan kepada masyarakat yang mata pencahariannya berbasis budidaya ikan lokal.

## Metode Penelitian
Metode penelitian menggunakan metode eksperimen dengan Teknik pengumpulan data secara observasi dan menggunakan aplikasi SPSS.

## Hasil dan Pembahasan
1. Analisis Glukosa Darah
Hasil  uji  Analisis  menunjukkan  interaksi  suhu  pada  kadar  glukosa  darah memberikan pengaruh nyata (P<0,05) terhadap glukosa darah ikan channa maru. Hal ini menyatakan bahwa tiap tingkatan suhu sangat mempengaruhi kadar glukosa darah ikan  yang  mengindikasikan  bahwa  ikan  tersebut  mengalami  stress,  biasanya  stress pada  ikan  dapat  diakibatkan  perubahan  lingkungan  yaitu  suhu  atau  akibat  beberapa perlakuan misalnya akibat pengangkutan atau transportasi.

## Tabel 1

## Nilai rata-rata interaksi pengaruh suhu terhadap glukosa darah
Glukosa  darah  yang  tinggi  (hiperglisemia)  terjadi  pada  ikan  yang  diberikan perlakuan  suhu  tinggi.  Adanya  perlakuan  suhu  tinggi  tubuh  ikan  mensekresikan hormone  stress  yang  berfungsi  menghambat  sekresi  insulin  yaitu  pada  perlakuan suhu  31  ºC  menghasilkan  161,8  mg/dL  –  192,0  mg/dL.  Glukosa  darah  pasca  stress memperlihatkan  fluktuasi  menurun,  tinggi  dan  menurun  kembali  ini  dapat  dilihat pada  suhu  29  ºC  menghasilkan  115,2  mg/dL  –  117,8  mg/dL.  Perlakuan  tersebut membuktikan  bahwa  suhu  29  ºC  mampu  menurunkan  glukosa  tinggi  dari pengambilan  sampel  pertama  sampai  pengambilan  sampel  diakhir  penelitian.  Hal tersebut  sesuai  menurut  Masjudi,  2016  yang  menyatakan  dimana  suhu  29  ºC  dapat menurunkan glukosa darah. Suhu mempengaruhi kadar glukosa darah, urea, uric acid dan  kadar  protein,  tetapi  polanya  tidak  konsisten.  Dari  data  tersebut  menunjukkan suhu  merupakan  factor lingkungan  uama  yang  dapat  menimbulkan  stress  pada ikan liar (Masjudi, Tang, & Syawal, 2016).

## 2. Analisis Hormon Kortisol
Hasil  uji  analisis  menunjukkan  interaksi  suhu  pada  hormon  kortisol memberikan  pengaruh  tidak  nyata  hal  tersebut  mungkin  bagian  dari  tindakan  non- genomik  kortisol  lainnya  baru-baru  ini  ditunjukkan  dan  tindakan  ini  mungkin sebagian independen dari reseptor kortisol umum (Das, Gompper, & Winkler, 2018). Kortisol  akhirnya  dapat  dimetabolisme  dan  diinaktivasi,  terutama  melalui  rute hepato-bilier-fekal.  Di  hati  dan  empedu,  kortisol  diinaktivasi  melalui  reduksi  dan konjugasi menjadi glukuronida atau sulfat.

## Tabel 2
Nilai rata-rata interaksi pengaruh suhu terhadap hormone kortisol
Sekitar  95%  dari  kortisol  yang  dimetabolisme  dalam  empedu  adalah  sulfat, sedangkan  bagian  yang  tersisa  adalah  glukuronidasi (Brooks,  Topczewski,  Ichiishi, Sanford,  &  Scott,  2014). Kedua  metabolit  tersebut  kemudian  dilepaskan  ke lingkungan  melalui  urin  dan  feses,  masing-masing,  mirip  dengan  steroid  lainnya (Brooks  et  al.,  2014). Kortisol  juga  dapat  berdifusi  keluar  dari  ikan,  terutama melintasi insang, dengan difusi pasif bentuk bebas (Brooks et al., 2014). Menurut Xu et al., 2015 respon primer melibatkan parameter hotmonal yaitu sekresi kortisol, oleh karena  itu  kortisol  umumnya  dianggap  sebagai  mediator  antara  stress  dan  aktivitas fisiologis lainnya pada ikan (Brooks et al., 2014) . bersamaan kedua set hormon stres, katekolamin dan kortisol, memiliki tindakan sekunder di berbagai jaringan dan organ yang  bertujuan  untuk  meningkatkan  kemungkinan  hewan  mengatasi  ancaman  stres. Tindakan  tersebut  termasuk  respons  yang  diinduksi  katekolamin  yang  terutama diarahkan  untuk  membuat  substrat  energik  tersedia  untuk  digunakan  oleh  otot  dan jaringan lain untuk memfasilitasi respons perilaku (Fabbri & Moon, 2016). Pelepasan kortisol memicu respon sekunder pada status oksidatif di jaringan hati, hal ini dapat dilihat  dalam  proses  aklimatisasi  terhadap  stressor  lingkungan (Moniruzzaman, Ghosal, Das, & Chakraborty, 2018). Pengujian kortisol menggunakan metode ELISA ini  juga  sensitive  terhadap  waktu  inkubasi,  suhu  dan  mungkin  dipengaruhi  oleh kostituen  lain  dalam  sampel (Geffroy  et  al.,  2018). Selain  itu,  paparan  stres  yang berkepanjangan  dan  perubahan  kortikosteroid  yang  bersirkulasi  (terutama  kortisol) mungkin  memiliki  efek  jangka  panjang  pada  fisiologi  stres  organisme  yang memengaruhi  kemampuan  koping  keturunannya (Colson,  Valotaire,  Geffroy,  & Kiilerich, 2015), (Colson et al., 2019) , (Jacobson et al., 2017) . baru-baru ini disebut sebagai "respons stres kuaterner" (Faught & Vijayan, 2020).
3. Analisis Hormon Glukagon
Hasil  uji  Analisis  menunjukkan  interaksi  suhu  pada  kadar  hormone  glukagon memberikan pengaruh nyata (P<0,05) terhadap hormone glukagon ikan channa maru. Perlakuan suhu tinggi 31 ºC menghasilkan 628,81-764,01 mg/ml yang menandakan kondisi ikan pasca stress.

## Tabel 3

## Nilai Rata-rata interaksi pengaruh suhu terhadap hormone glukagon
Dalam  keadaan  stress  hormone  glukagon  menimbulkan  berbagai  efek  pada metabolisme  karbohidrat,  lemak,  dan  protein  di  hati.  Hal  ini  menjelaskan  bahwa beberapa microgram glukagon sudah dapat menyebabkan peningkatan kadar glukosa darah  sebesar  dua  kali  lipat  atau  bahkan  lebih  dalam  waktu  beberapa  menit  saja (Schubert, Sander, Ester, Kriegel, & Xu, 2017) . Akibatnya proses yang terjadi adalah adanya  peningkatan  produksi  glukagon  untuk  meningkatkan  kadar  kadar  glukosa darah  dengan  glikogenolisis,  liposis  dan  gluconeogenesis.  Dengan  peningkatan glikolisis hati dan glukogenesis (Cai Li et al., 2019) dengan demikian, ada hubungan erat  antara  metabolism  glukosa  dan  respon  imun.  Sebagai  hormone  kunci  dalam mengatur metabolism glukosa, glukagon melawan kerja insulin, yang dimediasi oleh reseptornya (Collaboration  et  al.,  2018) .  Selanjutnya  sekresi  glukagon  pada  ikan dapat  dipengaruhi  oleh  infeksi  pathogen  dan  peradangan.  Tingkat  ekspresi  reseptor glukagon  yang  lebih  tinggi  di  hati  konsisten  dengan  fungsi  glukagon  di  hati  ikan, termasuk  stimulasi  gluconeogenesis  dan  penghambatan  sintesis  glikogen  dan glikolisis (Collaboration  et  al.,  2018) .  Inaktivasi  reseptor  glukagon  menyebabkan hyperplasia  sel  alfa  ditemukan  pada  jenis  ikan  zebra,  yang  menunjukkan  bahwa kedua  reseptor  fungsional (Mingyu Li et al.,  2015). Selain  itu,  diet  tinggi  glukosa / kolesterol  tinggi  menginduksi  peradangan  perifer  dan  sentral  ikan  zebra,  dan meningkatkan ekspresi mRNA glukagon (Mingyu Li et al., 2015) . Dengan demikian, kerja sistem glukagon/Gcgr dapat dipengaruhi oleh respon imun.
4. Kualitas Air Tabel 4 Kualitas air selama penelitian Parameter Suhu Perlakuan (A) 25ºC (B) 29 ºC ( C ) 31 ºC (K) 27 ºC pH 6,0-6,5 5,5-6,8 6,0-6,5 6,0-6,5 Oksigen Terlarut (mg/L) 3,0-6,0 5,0-6,0 3,0-6,0 5,0-6,0 Ammonia (mg/L) 0,30-0,56 0,30-0,56 0,30-0,60 0,30-0,50
Hasil  pengukuran  Derajat  keasaman  (pH)  menunjukkan  keadaan  air  pada kondisi asam atau basa. Nilai rata-rata pH selama penelitian berkisar rentang antara 5,5-6,8 yang dikatakan dalam batasan normal. Oksigen terlarut untuk budidaya ikan jenis  channa  berkisar  antara  3-7  mg/L  dengan  jenis  ikan  channa  yang  memiliki kemampuan  bernapas  langsung  dari  udara  dengan  menggunakan  organ  labirin bernama divertikula yang terletak di bagian atas insang sehingga mampu menghirup udara  dari  atmosfer (Ernawati et  al ,  2019). Sedangkan  nilai  konsentrasi  ammonia selama penelitian berkisar 0,30-0,60 mg/L-1. Nilai tersebut masih berada pada batas yang  dapat  dikategorikan  mendukung  pertumbuhan  dan  kelangsungan  hidup  jenis ikan channa. Kisaran ammonia untuk budidaya ikan gabus adalah < mg/L. Selain itu, kenaikan  suhu  yang  parah  bisa  menjadi  pemicu  stres  itu  sendiri (Samaras, Papandroulakis, Lika, & Pavlidis, 2018).

## 5. Survival Rate (Kelulushidupan)
Perlakuan  suhu  27  ºC  sekaligus  sebagai  kontrol  dengan  persentase kelulushidupan  77%,  pada  perlakuan  A  suhu  25  ºC  menghasilkan  68%,  pada perlakuan  B  suhu  29  ºC  menghasilkan  81%  dan  pada  perlakuan  D  suhu  31  ºC persentase  SR  berkisar  74%.  Dapat  dilihat  pada  persentase  Kelulushidupan  ikan paling rendah yaitu pada suhu 25 ºC hal ini menandakan adanya adaftasi atau respon fisiologis dari ikan uji ketika lingkungan dan kualitas air seperti suhu ekstrim dapat mempengaruhi  kehidupan  ikan,  dengan  kecenderungan  ikan  akan  banyak mengeluarkan  feses  pada  awal  kemudian  pingsan  dan  mati.    Hal  ini  bisa  dikatakan kelulushidupan  ikan  sangat  bergantung  pada  daya  adaftasi  ikan  terhadap  makanan, lingkungan,  status  Kesehatan  ikan,  padat  tebar  dan  kualitas  air  yang  cukup mendukung. Dapat dilihat pada persentase Kelulushidupan ikan paling rendah yaitu pada suhu 25 ºC hal ini menandakan adanya adaftasi atau respon fisiologis dari ikan uji  ketika  lingkungan  dan  kualitas  air  seperti  suhu  ekstrim  dapat  mempengaruhi kehidupan ikan,  dengan  kecenderungan  ikan  akan  banyak mengeluarkan  feses  pada awal  kemudian  pingsan  dan  mati.  Tingkat  kematian  ikan  yang  tinggi  disebabkan ukuran  ikan,  ukuran  ikan  mempengaruhi  kelangsungan  hidup  ikan,  fase  kritis  dan rentan  mati  saat  proses  pemeliharaan  suhu  yang  berbeda  juga  mempengaruhi kelangsungan  hidup  ikan  uji.  Perubahan  suhu  secara  drastic  dapat  menyebabkan stress  pada  ikan  atau  membunuhnya (Gunawan et  al 2019). Suhu  rendah
menyebabkan  laju  metabolism  yang  lambat  sehingga  aktivitas  enzim  dan  hormone tidak optimal bahkan tidak bekerja sama sekali (Ridwantara, Buwono, Suryana, Lili, & Suryadi, 2019).
Contoh pengutipan secara langsung sebagai berikut:
Isi  kutipan  secara  langsung.  Quote  quote  quote  quote  quote  quote  quote  quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote. quote The text continues here. Proofs must be formatted as follows: quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote quote , Penjelasan kutipan tersebut bisa di tulis di sini.

## Kesimpulan
Penelitian ini menyatakan bahwa tiap tingkatan suhu sangat mempengaruhi kadar glukosa  darah  ikan  yang  mengindikasikan  bahwa  ikan  tersebut  mengalami  stress, biasanya  stress  pada  ikan  dapat  diakibatkan  perubahan  lingkungan  yaitu  suhu  atau akibat  beberapa  perlakuan  misalnya  akibat  pengangkutan  atau  transportasi.  Glukosa darah pasca stress memperlihatkan fluktuasi menurun, tinggi dan menurun kembali ini dapat  dilihat  pada  suhu  29  ºC  menghasilkan  115,2  mg/dL  –  117,8  mg/dL  dapat menurunkan  glukosa  darah.  Kortisol  juga  dapat  berdifusi  keluar  dari  ikan,  terutama melintasi  insang,  dengan  difusi  pasif  bentuk  bebas.  Pelepasan  kortisol  memicu  respon sekunder  pada  status  oksidatif  di  jaringan  hati,  hal  ini  dapat  dilihat  dalam  proses aklimatisasi  terhadap  stressor  lingkungan.  Hal  ini  menjelaskan  bahwa  beberapa microgram  glukagon  sudah  dapat  menyebabkan  peningkatan  kadar  glukosa  darah sebesar  dua  kali  lipat  atau  bahkan  lebih  dalam  waktu  beberapa  menit  saja.  Akibatnya proses yang terjadi adalah adanya peningkatan produksi glukagon untuk meningkatkan kadar  kadar  glukosa  darah  dengan  glikogenolisis,  liposis  dan  gluconeogenesis.  Nilai rata-rata  pH  selama  penelitian  berkisar  rentang  antara  5,5-6,8  yang  dikatakan  dalam batasan normal. Kisaran ammonia untuk budidaya ikan jenis channa adalah < mg/L-1.

## BIBLIOGRAFI
Brooks, Allen F., Topczewski, Joseph J., Ichiishi, Naoko, Sanford, Melanie S., & Scott, Peter  J.  H.  (2014).  Late-stage  [18  F]  fluorination:  new  solutions  to  old  problems. Chemical Science , 5 (12), 4545–4553. Google Scholar
Collaboration, XENON, Aprile, E., Aalbers, J., Agostini, F., Alfonsi, M., Althueser, L., Amaro, F. D., Anthony, M., Arneodo, F., & Baudis, L. (2018). Dark matter search results  from  a  one  ton-year  exposure  of  XENON1T. Physical  Review  Letters , 121 (11), 111302. Google Scholar
Colson,  Violaine,  Cousture,  Morgane,  Damasceno,  Danielle,  Valotaire,  Claudiane, Nguyen,  Thaovi,  Le  Cam,  Aurélie,  &  Bobe,  Julien.  (2019).  Maternal temperature exposure impairs emotional and cognitive responses and triggers dysregulation of neurodevelopment genes in fish. PeerJ , 7 , e6338. Google Scholar
Colson,  Violaine,  Valotaire,  Claudiane,  Geffroy,  Benjamin,  &  Kiilerich,  Pia.  (2015).
Egg  cortisol  exposure  enhances  fearfulness  in  larvae  and  juvenile  rainbow  trout. Ethology , 121 (12), 1191–1201. Google Scholar
Das,  Shibananda,  Gompper,  Gerhard,  &  Winkler,  Roland  G.  (2018).  Confined  active Brownian  particles:  theoretical  description  of  propulsion-induced  accumulation. New Journal of Physics , 20 (1), 15001. Google Scholar
Faught, Erin, & Vijayan, Mathilakath M. (2020). Glucocorticoid and mineralocorticoid receptor activation modulates postnatal growth. Journal of Endocrinology , 244 (2),
261–271. Google Scholar
Geffroy, Benjamin, Sadoul, Bastien, Bouchareb, Amine, Prigent, Sylvain, Bourdineaud, Jean  Paul,  Gonzalez-Rey,  Maria,  Morais,  Rosana  N.,  Mela,  Maritana,  Nobre Carvalho,  Lucélia,  &  Bessa,  Eduardo.  (2018).  Nature-based  tourism  elicits  a phenotypic  shift  in  the  coping  abilities  of  fish. Frontiers  in  Physiology , 9 ,  13.
Google Scholar
Jacobson,  Mark  Z.,  Delucchi,  Mark  A.,  Bauer,  Zack  A.  F.,  Goodman,  Savannah  C., Chapman,  William  E.,  Cameron,  Mary  A.,  Bozonnat,  Cedric,  Chobadi,  Liat, Clonts, Hailey A., & Enevoldsen, Peter. (2017). 100% clean and renewable wind, water,  and  sunlight  all-sector  energy  roadmaps  for  139  countries  of  the  world. Joule , 1 (1), 108–121. Google Scholar
Li,  Cai,  Maggi,  Federico,  Zhang,  Keni,  Guo,  Chaobin,  Gan,  Yixiang,  El‐Zein,  Abbas, Pan,  Zhejun,  &  Shen,  Luming.  (2019).  Effects  of  variable  injection  rate  on reservoir  responses  and  implications  for  CO2  storage  in  saline  aquifers. Greenhouse Gases: Science and Technology , 9 (4), 652–671. Google Scholar
Li, Mingyu, Dean, E. Danielle, Zhao, Liyuan, Nicholson, Wendell E., Powers, Alvin C., &  Chen,  Wenbiao.  (2015).  Glucagon  receptor  inactivation  leads  to  α-cell hyperplasia  in  zebrafish. The  Journal  of  Endocrinology , 227 (2),  93. Google

## Scholar
Masjudi,  Heri,  Tang,  Usman  M.,  &  Syawal,  Henny.  (2016).  Kajian  tingkat  stres  ikan Tapah  (Wallago  leeri)  yang  dipelihara  dengan  pemberian  pakan  dan  suhu  yang berbeda. Berkala Perikanan Terubuk , 44 (3), 69–83. Google Scholar
Moniruzzaman,  Mahammed,  Ghosal,  Indranath,  Das,  Debjit,  &  Chakraborty,  Suman Bhusan. Melatonin ameliorates H2O2-induced oxidative stress through modulation of Erk/Akt/NFkB pathway. , 51 Biological Research (2018). Google Scholar
Qosasi, Achsanul, Maulina, Erna, Purnomo, Margo, Muftiadi, Anang, Permana, Erwin, &  Febrian,  Fajri.  (2019).  The  impact  of  information  and  communication technology  capability  on  the  competitive  advantage  of  small  businesses.
International Journal of Technology . Google Scholar
Ridwantara, Dyara, Buwono, Ibnu Dwi, Suryana, Asep Agus Handaka, Lili, Walim,  & Suryadi,  Ibnu  Bangkit  Bioshina.  (2019).  Uji  Kelangsungan  Hidup  dan Pertumbuhan Benih Ikan Mas Mantap (Cyprinus carpio) Pada Rentang Suhu yang Berbeda. Jurnal Perikanan Kelautan , 10 (1). Google Scholar
Samaras,  Athanasios,  Papandroulakis,  Nikos,  Lika,  Konstadia,  &  Pavlidis,  Michail.
(2018). Water temperature modifies the acute stress response of European sea bass, Dicentrarchus  labrax  L.(1758). Journal  of  Thermal  Biology , 78 ,  84–91. Google Scholar
Schubert,  Erich,  Sander,  Jörg,  Ester,  Martin,  Kriegel,  Hans  Peter,  &  Xu,  Xiaowei. (2017).  DBSCAN  revisited,  revisited:  why  and  how  you  should  (still)  use DBSCAN. ACM Transactions on Database Systems (TODS) , 42 (3), 1–21. Google Scholar
Susanto,  Ahmad.  (2014). Pengembangan  pembelajaran  IPS  di  SD .  Kencana. Google Scholar

## Copyright holder:
Rohmah Widiastuti, Maheno Sri Widodo, Abd. Rahem Faqih
(2022)
First publication right:

## Syntax Idea
This article is licensed under: