OPTIMASI WAKTU PENGERINGAN TERHADAP AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK ETANOL RIMPANG TEMU PUTIH ( Curcuma aromatica Salisb)
Nia Yuliani*, Mamay Maslahat, Puji Lestari Program Studi Biologi FMIPA Universitas Nusa Bangsa Jl. KH Soleh Iskandar KM 4 Cimanggu Tanah Sareal, Bogor 16166 *e-mail : niayuliani88@yahoo.co.id

## ABSTRACT

## Optimization of The Drying Time of The Anti-Oxidant Activity of The Ethanol Extract of The Rhizomes of Temu Putih (Curcuma aromatica Salisb)
Indonesia is a tropical country that has many varieties of medicinal herbal plants. One of them is Curcuma aromatica  Salisb.  It  has  a  secondary  metabolite  that  acts  as  an antioxidant.  The  metabolite  will degrade  if  it  goes through  a  long  drying  process.  The  Curcuma  aromatica  Salisb  rhizome  is  dried  at  a  temperature  of  65oC  with variant time durations : 22, 23, 24, 25 and 26 hours. The dried rhizome is extracted with ethanol as the solvent and the results are 14.16%, 11,89%, 15,95%, 12,10% dan 11,97% respectively. Phytochemical test shows the existence of alkaloids and flavonoids in the extract. The measurement of antioxidant activity is done using the DPPH method with a  spectrophotometer  at  517  nm  wavelength.  The  result  is  then  compared  to  Quercetin  as  the  positive  control.  The IC50  values of Quercetin, extracts of Curcuma after 22, 23, 24, 25 and 26 hours after drying respectively are 6,47µ g/ml , 160,54µ g/ml, 133,17µ g/ml, 117,81µ g/ml, 144,69 µ g/ml, dan 157,7 µ g/ml. The extracts after 23-25 hours of drying have medium antioxidant levels, while the ones with 22 and 26 hours of drying have low antioxidant levels. The duration of drying affects the antioxidant activity of Curcuma aromatica salisb extract. The highest value of IC50 is achieved on the positive control of Quercetin and followed by the Curcuma extract with 24 hours of drying.
Key words : ethanol, Curcuma aromatica salisb, drying duration, antioxidant activity

## ABSTRAK
Indonesia merupakan negara tropis yang memiliki berbagai macam tanaman obat. Salah satunya adalah temu putih  (Curcuma  aromatica  Salisb).  Temu  putih  mengandung  senyawa  metabolit  sekunder  yang  bermanfaat  sebagai antioksidan. Senyawa metabolit sekunder akan rusak bila dikeringkan dengan waktu yang lama.Rimpang temu putih dikeringkan pada suhu 65oC dengan variasi waktu 22, 23, 24, 25 dan 26 jam. Simplisia temu putih diekstrak dengan pelarut  etanol  diperoleh  rendemen  berturut-turut,  14,16%,  11,89%,  15,95%,  12,10%  dan  11,97%.  Uji  Fitokimia menunjukkan adanya alkaloid dan flavonoid pada ekstrak etanol rimpang temu putih. Penentuan aktivitas antioksidan dilakukan  dengan  metode  DPPH  menggunakan  spektrofotometer  pada  panjang  gelomban  g  517  nm.  Hasilnya dibandingkan dengan Kuersetin sebagai kontrol positif. Nilai IC50 Kuersetin, ekstrak etanol rimpang temu putih 22, 23 24, 25 dan 26 jam berturut-turut adalah 6,47μg/ml , 160,54μg/ml, 133,17μg/ml, 117,81μg/ml, 144,69 μg/ml, dan 157,7  μg/ml.  Ekstrak  etanol  rimpang  temu  putih  pengeringan  23-25  jam  memiliki  aktivitas  antioksidan  sedang, sedangkan  pengeringan  22  dan  26  jam  memiliki  aktivitas  antioksidan  lemah.  Lama  proses  pengeringan mempengaruhi aktivitas antioksidan ekstrak etanol rimpang temu putih. IC50 terbaik diperoleh pada standar positif Kuersetin kemudian pada ekstrak etanol rimpang temu putih pengeringan 24 jam.
Kata Kunci : etanol, Curcuma aromatica Salisb, lama pengeringan, aktivitas antioksidan

## PENDAHULUAN
Indonesia sebagai negara tropis memiliki  beranekaragam  tumbuhan  yang dapat  dimanfaatkan  untuk  kepentingan manusia. Masyarakat Indonesia sejak zaman dahulu  telah  mengenal  tanaman  yang mempunyai  khasiat  obat  atau  menyem- buhkan berbagai macam penyakit. Tanaman yang berkhasiat obat tersebut dikenal dengan sebutan  tanaman  obat  tradisional.  Temu
putih  ( Curcuma  aromatica  Salisb )  me- rupakan keluarga Zingiberaceae yang
tumbuh  liar  dan  banyak  ditemukan  di  India dan  Asia  Tenggara.  Secara  tradisional  temu putih  digunakan  sebagai  obat  anti  radang, obat  memar,  keseleo  dan  infeksi  kulit.  Di China  temu  putih  dimanfaatkan  oleh masyarakat sebagai obat kanker.
Komponen  utama  yang  berkhasiat dalam  rimpang  temu  putih  adalah  kurku- minoid,  flavonoid,  polifenol,  dan  minyak
atsiri. Temu putih memiliki sifat antioksidan yang  dapat  menahan  zat  radikal  bebas penyebab  tumbuhnya  sel  kanker,  anti- inflamasi  (peradangan)  serta  dapat  me- ningkatkan  sel  darah  merah.  Rimpang  temu putih  mempunyai  potensi  sebagai  sumber antioksidan.  Senyawa-senyawa  antioksidan temu putih dapat mengalami kerusakan pada saat  proses  pengolahan.  Salah  satu  cara pengolahan  yang  berpotensi  menyebabkan kerusakan antioksidan adalah tahap pengeringan  dalam  pembuatan  simplisia temu putih.
Mutu simplisia yang dikeringkan sangat dipengaruhi oleh waktu proses pengeringan. Waktu pengeringan yang terlalu cepat dapat menyebabkan simplisia temu putih memiliki kadar air yang masih tinggi sehingga mudah diserang  jamur.  Pengeringan  yang  terlalu lama  akan  menyebabkan  kerusakan  mutu simplisia.  Kondisi  suhu  pengeringan  paling optimal  pada  pengeringan  kunyit  adalah pengeringan  dengan  oven  pada  suhu  65oC. Berdasarkan  hal  itu  maka  dilakukan  pe- ngeringan  pada  temu  putih  dengan  suhu 65oC.  Akan  tetapi  belum  diketahui  waktu yang  tepat  untuk  mendapatkan  aktivitas antioksidan  optimal  dari  rimpang  temu putih.  Oleh  karena  itu  perlu  dilakukan penelitian  untuk  mengetahui  lama  pe- ngeringan  yang  tepat  untuk  mendapatkan aktivitas antioksidan yang optimal.

## BAHAN DAN METODE

## Bahan dan Alat
Bahan  yang  digunakan  adalah  rimpang temu    putih    dari daerah Sukabumi,   Jawa Barat   berusia   11 bulan,   ammonia  25%, etanol,      HCl37%,  pereaksi  Dragendorff, pereaksi  Mayer,  Pereaksi  Wagner,  Pereaksi Liebermann-Burchard,  serbuk  Magnesium, Amilalkohol,  FeCl3,1%,  dietil  eter,  DPPH dan Kuersetin.
Alat  yang  digunakan  adalah  oven, timbangan analitik ,  peralatan gelas, eksikator, spektrofotometer
Visibel
Spectronic Genesys 20.

## Prosedur Kerja
Rimpang temu putih dicuci dan dibersihkan, kemudian  ditiriskan.  Rimpang  temu  putih dipotong  memanjang  dengan  ketebalan  0,6- 0,7  mm.  Rimpang  temu  putih  yang  telah dipotong  dikeringkan  pada  suhu  65ºC dengan waktu bervariasi. Selanjutnya dihaluskan sampai menjadi serbuk simplisia. lalu  dilakukan  proses  ekstraksi  meng- gunakan  pelarut  etanol  secara  maserasi dengan  perbandingan  1:20.  Filtrat  dipi- sahkan dan dipekatkan menggunakan evaporator.

## 1)  Analisis fitokimia
Analisis  fitokimia  dilakukan  berdasarkan Harborne  (1987).  Identifikasi    yang  di- lakukan adalah uji Alkaloid, tannin, flavonoid, saponin, steroid, dan triterpenoid. Analisis  fitokimia  ini  adalah  untuk  me- nentukan  ada  atau  tidaknya  kandungan metabolit  sekunder  yang  berpotensi  sebagai antioksidan dalam sampel tumbuhan. Dalam pengujian    sampel    yang  digunakan  adalah filtrat hasil maserasi rimpang temu putih.

## 2)  Uji Antioksidan

## a. Pembuatan larutan blanko
Larutan    yang    digunakan    adalah methanol.  Pembuatan    larutan  blanko dilakukan dengan cara memipet sebanyak  1  ml  larutan  DPPH  1  mM kedalam  labu  takar  10  ml,  lalu ditambahkan  metanol  (p.a)  hingga tanda batas volume.
b. Pembuatan Larutan Kontrol Positif
1. Kuersetin  sebanyak  59  mg  di- timbang  kemudian  dimasukkan  ke- dalam  labu  takar  50  ml,  lalu  di- larutkan  dengan    metanol    (p.a) hingga  tanda  batas  volume  (larutan induk 1000 µg / ml atau ppm).
2. Pembuatan      larutan      seri  dengan konsentrasi  1,  2,  3,  4  dan 5  µg  /  ml atau  ppm  dan  ditambahkan  1  ml larutan  DPPH  1  mM,  ditambahkan metanol  (p.a)  hingga  tanda  batas
volume  dan    diinkubasi    pada    suhu 37 o C selama 30 menit.
3. Diukur absorbansinya dengan menggunakan spektrofotometer UV-
VIS pada λ : 517 nm.
c. Persiapan Larutan Bahan Uji
1. Pembuatan  larutan  induk  bahan  uji 1000  µg/mL.  Sebanyak  1,0  mg ekstrak  ditimbang    dan    dilarutkan dalam    1    mL    metanol,  kemudian dikocok hingga homogen.
2. Pembuatan  larutan  seri  40,  60,  80, 100,    120,    140,    dan    160  ppm, Inkubasi  pada  suhu   kamar selama 30  menit,  setelah  itu  ditambahkan  1
mL  metanol  dan  dikocok  kembali hingga homogen.
3. Diukur absorbansinya dengan meng- gunakan  spektrofotometer  UV-VIS pada λ : 517 nm.

## Perhitungan
Pengukuran aktivitas antioksidan dihitung dengan rumus sebagai berikut :

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## A.  Determinasi Tanaman
Determinasi tanaman merupakan proses untuk menentukan secara spesifik nama atau jenis  dari  suatu  tumbuhan.  Determinasi bertujuan  untuk  menentukan  suatu  spesies yang lebih spesifik dan tepat sasaran, karena dalam  proses  pemanfaatannya,  tumbuhan memiliki  berbagai  jenis  varietas  yang  ham- pir  mirip  untuk  digunakan  pada  penelitian, jamu-jamu  dan  obat.  Rimpang  temu  putih yang digunakan berasal dari daerah
Sukabumi usia 11 bulan. Determinasi rimpang temu putih dilakukan  di  Pusat  Penelitian  Biologi (Herbarium  Bogoriense)  Lembaga  Ilmu Pengetahuan  Indonesia  (LIPI)  Cibinong, Bogor.  Hasil    uji  Determinasi  menyatakan
bahwa  rimpang  temu  putih  yang  digunakan dalam penelitian ini adalah temu putih jenis Curcuma aromatica Salisb.

## B.  Pengeringan Simplisia
Rimpang  temu  putih  yang  digunakan pada  penelitian  ini  merupakan  bahan  yang memiliki  kadar  air  dalam  jumlah  relatif tinggi.  Maka  dilakukan  pengeringan  ter- hadap sampel. Pengeringan dilakukan dengan waktu yang bervariasi, yaitu 22,   23, 24,  25,  dan  26  jam.  Simplisia  yang telah mengalami  pengeringan,  kemudian  di- tentukan  kadar  airnya.  Kadar  air  simplisia temu putih dilakukan   dengan   cara   pema- nasan  pada  suhu  1050C.  Hasilnya  berkisar antara 6,63-7,38 %.

## C.  Uji Fitokimia
Uji  fitokimia  terhadap  ekstrak  rimpang temu  putih  dilakukan  dengan  pengujian kimia  senyawa  golongan  alkaloid,  steroid/ triterpenoid  flavonoid,  tanin  serta  saponin. Pengujian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui ada  atau  tidaknya  senyawa  metabolit sekunder  di  dalam  sampel  tersebut.  Uji fitokimia  ini  merupakan  suatu  uji  kualitatif dari  sampel  untuk  menentukan  banyak  atau sedikitnya  serta      ada  atau  tidaknya  bahan aktif dalam sampel yang akan dianalisis. Uji pendahuluan  ini  merupakan  kunci  untuk melanjutkan tahapan berikutnya.
Pada  uji  alkaloid,  ekstrak  etanol  temu putih  pengeringan  25  dan  26  jam  endapan coklat  yang  terbentuk  dengan  pereaksi Wagner  tidak  sebanyak  endapan  yang dibentuk  oleh  ekstrak  etanol  temu  putih pengeringan  22,  23,  dan    24    jam.    Begitu pula    pada  pengujian  flavonoid,  ekstrak etanol  temu  putih  pengeringan  25  dan  26 jam  hanya    memberikan    sedikit    warna merah  coklat  pada  lapisan  amil  alkohol (lebih  sedikit  dari  ekstrak  etanol  temu  putih pengeringan  22,  23  dan  24  jam).  Hal    ini menandakan kandungan alkaloid dan flavonoid  pada  ekstrak  etanol  temu  putih pengeringan 25 dan 26 jam sudah berkurang.
Tabel 1. Hasil Uji Fitokimia Ekstrak Etanol Temu Putih
Gambar  1.  Kurva  Hubungan  Konsentrasi  (µ  g/ml)  dengan  Peredaman  Radikal  Bebas  (% Inhibisi) Ekstrak Temu Putih Pengeringan 22 jam
Triterpenoid  pada  temu  putih  tidak terdeteksi diduga karena triterpenoid bersifat     non   polar  sehingga  tidak  terbawa pada  saat  ekstraksi      dengan      pelarut semipolar  (etanol).    Pada    pengeringan    24 jam sedikit terlihat.

## D.  Uji aktivitas Antioksidan
Uji aktivitas antioksidan ekstrak etanol temu putih  terhadap  radikal  bebas  DPPH  di-
lakukan dengan cara spektrofotometri dengan  kuersetin  sebagai  kontrol  positif. Dilakukan  pengukuran  λmaks  antara  500- 525.  Panjang  gelombang  maksimum  yang didapatkan  adalah  pada  panjang  gelombang 517  nm  Aktivitas  antioksidan  adalah kemampuan  antioksidan  untuk  menghambat reaksi  oksidasi  yang  dinyatakan  sebagai persen  penghambatan.  Hasil  uji  aktivitas antioksidan  dalam  ekstrak  rimpang  temu putih adalah sebagai berikut:
Gambar  2.  Kurva  Hubungan  Konsentrasi  (µ  g/ml)  dengan  Peredaman  Radikal  Bebas  (%
Inhibisi) Ekstrak Temu Putih Pengeringan 23 Jam
Gambar  3.  Kurva  Hubungan  Konsentrasi  (µ  g/ml)  dengan  Peredaman  Radikal  Bebas  (% Inhibisi) Ekstrak Temu Putih Pengeringan 24 Jam
Gambar  4.  Kurva  Hubungan  Konsentrasi  (µ  g/ml)  dengan  Peredaman  Radikal  Bebas  (% Inhibisi) Ekstrak Temu Putih Pengeringan 25 Jam.
Gambar  5.  Kurva  Hubungan  Konsentrasi  (µ  g/ml)  dengan  Peredaman  Radikal  Bebas  (%
Inhibisi) Ekstrak Temu Putih Pengeringan 26 Jam
Gambar 6. Kurva Hubungan Konsentrasi Kuersetin (µ g/ml) dengan Peredaman Radikal Bebas (% Inhibisi)
Gambar 7. Kurva Hubungan Konsentrasi Kuersetin (µ g/ml) dengan Peredaman Radikal Bebas (% Inhibisi)
Gambar 8. Grafik Nilai IC50 Ekstrak Etanol Temu Putih dan Kontrol Positif
Perbandingan  nilai  IC50  sampel  dan kontrol  positif  sebagai  parameter  aktivitas antioksidan  terhadap  radikal  bebas  DPPH dapat  dilihat  pada  Gambar  8.  Pada  sampel 22-24 jam nilai IC50   semakin  kecil,  pada sampel  25 dan  26  jam   nilai  IC50   naik kembali.  Hal  ini  disebabkan  pada  lama pengeringan  22  dan  23  jam  kemungkinan masih  ada  metabolit  sekunder  yang  terjerap dalam  air  sehingga  tidak  terekstrak  secara sempurna.  Sedangkan  pada  lama  penge- ringan  25  dan  26  jam  zat  aktif  sudah  ada yang mengalami kerusakan. Hal ini sebanding  dengan  hasil  fitokimia  yang memperlihatkan reaksi warna  yang semakin melemah    untuk  ekstrak    etanol    dengan lama pengeringan 25 dan 26 jam.
Nilai  IC50    yang  didapatkan  untuk ekstrak   etanol   dengan   lama pengeringan 22,  23,  24,  25  dan  26  jam  berturut-turut adalah 160,54µ g/ml 133,17 µ g/ml, 117,81µ g/ml,  44,69µ  g/ml,  dan  157,70µ  g/ml. Berbeda    jauh    dengan    Kuersetin  sebagai kontrol  positif  yang  memiliki  nilai  IC50 6,47  µ  g/ml.  Secara  spesifik  suatu  senyawa dikatakan  sebagai  antioksidan  sangat  kuat jika  nilai  IC50  kurang  dari  50  µg/ml,  kuat untuk  IC50  bernilai  50-100  µg/ml,  sedang jika  bernilai  100-150  µg/ml,  dan  lemah  jika nilai  IC50  bernilai  151-200  µg/ml  (Zuhra dkk,  2008).  Ekstrak  etanol  rimpang  temu putih  dengan  pengeringan  23-25  jam termasuk  memiliki  aktivitas  antioksidan sedang.  Ekstrak  etanol  rimpang  temu  putih
dengan pengeringan 22 dan 26 jam termasuk memiliki  aktivitas antioksidan yang lemah.

## KESIMPULAN
Hasil  penelitian  menunjukkan bahwa lama proses  pengeringan  berpengaruh  terhadap aktivitas  antioksidan  rimpang  temu  putih. Ekstrak  etanol  rimpang  temu  putih  dengan lama pengeringan simplisia 24 jam memiliki      aktivitas      antioksidan  terbaik, yaitu dengan nilai IC50 117,81 µ g/ml.

## SARAN
Untuk  mendapatkan  senyawa   aktif lain dalam  rimpang  temu  putih  yang  berkhasiat sebagai antioksidan perlu dilakukan ekstraksi dengan pelarut lain, seperti heksan dan etil asetat.

## DAFTAR PUSTAKA
Adinda.  S  dan  D.K.  Ningrum.  2006. Pengeringan  Kunyit  menggunakan Microwave  dan  Oven .  Universitas Diponegoro. Semarang.
Buckle,  K.A.  1985. Ilmu  Pangan. Cet.1. Universitas Indonesia. Jakarta.
Cresswell,  C.  J.  1982. Analisis  Spektrum
Senyawa Organik. Edisi kedua. Institut Teknologi Bandung Ditjen  POM.  2000. Parameter  Standar Umum Ekstrak Tumbuhan Obat Departemen Kesehatan RI. Jakarta
Esvandiari.  2002.  Pengaruh  Ekstrak  Temu
Putih  ( Curcuma  zedoaria )  dan  Kunir
Putih ( Curcuma mangga ) pada Pertumbuhan Saccharomyces cerevisiae. Skripsi . Fakultas Matematika  dan  Ilmu  Pengetahuan Alam Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Hamburger  M.  and  K.    Hostettmaun.  1991.
Bioactivity  in  plants:  The  link between phytochemistry and medicine. Phytochemical 30(12):3864-3874. Harborne  JB.  1987. Metode  Fitokimia.  Ed ke-2. Institut  Teknologi  Bandung.
Bandung.
Haris,M.  2011.  Penentuan  Kadar  Flavonoid Total  Dan  Aktifitas  Antioksidan  Dari Daun  Dewa (Gynura  Pseudochina
[Lour]  Dc) Dengan  Spektrofotometer Uv-Visibel. Skripsi. Universitas Andalas. Padang Hagerman,  E.  The  Tannin  Handbook. http://chemistry.muohio.edu/hag erman/ , diakses 28 Juli 2013.
Heyne K. 1987. Tanaman Berguna Indonesia .  Badan  Litbang  Kehutanan Jakarta,  penerjemah.  Jilid  I.  Badan Penelitian dan Pengembangan Kehutanan. Jakarta. Irawan,  D.  2006.  Penentuan  Aktivitas Antioksidan  Ekstrak  Mahkota  Dewa, Temu  Putih,  Sambiloto  dan  Keladi
Tikus secara In Vitro . Skripsi . Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Kiswandono.A.A.  dan  M.  Maslahat.  2011.
Uji Antioksidan Ekstrak Heksana, Etil Asetat,  Etanol,  etanol  80%  Dan  Air Daun Kelor ( Moringa oleifer a,
Lamk). Jurnal  Sains  Natural 1(1): 39
– 44.
Kuroyanagi  M.  and  A.  Ueno.  1987.
Structures of sesquiterpenesfrom Curcuma  aromatica  Salisb. Chemical
& Pharmaceutical Bulletin 35(1): 53- 59 .
Kuronayagi  M,  M.  Ohshiro  and  A.Ueno. 1990.  Structures  of  Sesquiterpenes from  Curcuma  longa. Phytochemistry Volume  29 .  University  of  Shizuoka. Japan.
Liang  OB,  Y.  Widjaja  dan  S.  Puspa.  1985.
Beberapa  aspek  isolasi,  identifikasi, dan  penggunaan  komponen  Curcuma xanthorriza Roxb dan Curcuma domestika  Val. Di  dalam:  symposium Nasional Temulawak . Lembaga Penelitian  Universitas  Padjadaran. Bandung. Markham, K.R. 1988. Cara Mengidentifikasi Flavonoid . Penerjemah  Kosasih  Padmawinata. ITB. Bandung. Miftahuddin, A. 2010. Diferensiasi Temulawak,  Kunyit,  dan  Bangle Berdasarkan Pola Pemisahan Senyawa Menggunakan  Kromatografi  Lapis Tipis. Skripsi . Institut Pertanian
Bogor. Bogor. P  rak  ash  ,  A  .  20  01.  Antioxidant  Activity . Medallion  Laboratories  :  Analithycal Progres 19 (2) : 1 – 4.
Pratiwi  W.  2006.  Penentuan  daya  inhibisi ekstrak  air  dan  etanol  temu  putih (Curcuma zeodaria) terhadap aktivitas tirosin  kinase  secara  in  vitro. Skripsi .
Institut Pertanian Bogor. Bogor. Satiti,  A.W.  2012.  Ekstraksi  Bertingkat Heksana,  Etanol  90%  dan  Air Simplisia Daun Sirsak Annona muricata Linn) serta  Potensinya Sebagai Zat Antioksidan alami. Skripsi .  Universitas  Nusa  Bangsa.
Bogor.
Sidik, M.W. Mulyono dan A. Mutadi. 1995.
Temulawak  (Curcuma  xanthorriza Roxb). Phyto Medika. Jakarta.
Sudirman,S.  2011.  Aktivitas  Antioksidan Dan  Komponen  Bioaktif  Kangkung Air ( Ipomoea quatica Forsk.). Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor
Tonnessen HH, G. Smistad, T. Agren and J. Karlsen.  1992. Studies  of  curcumin and  curcuminoid.  XX  III:  Effects  of Curcumin on Liposomal Lipid Peroksidastion. Quiles  JL,  MD  Mesa,  CLR  Tortosa,  CM Aguilera, M. Battio, A. Gil, and MCR Tortosa. 2002. Curcuma longa extract suplementation reduces oxidative stress and attenuates aortic fatty streak development  in  rabbits. Arteriolscler Thromb Vasc Biol. 22: 1225-1231.
Wijayakusuma  HMH.  1997.  Hidup  Sehat Secara  Hembing. Volume  ke-6 .  PT
Gramedia. Jakarta.
Zuhra,C.F.,  BT  Juliati,  S.  Herlince. 2008.
Aktivitas  Antioksin  dan  Senyawa Flavonoid dari Daun Katuk (Sauropus androgunus (l) Merr.). Jurnal Biologi Sumatera . Universitas Sumatera Utara. Medan.