e- ISSN: 2715-033X                 JURNAL AGROPLASMA, Vol. 9 No. 2, Oktober  2022: 231-238
Infektivitas Cendawan Entomopatogen Lecanicillium lecanii Terhadap Mortalitas Hama Penggerek Ubi Jalar Cylasformicarius
Putri Kemala Dewi 1 , Lutfi Afifah 1 , Tatang Surjana 1 , Anik Kurniati 2
1 Program Studi Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Singaperbangsa Karawang, Jl. H.S RonggoWaluyo, Puseurjaya, Telukjambe Timur, Karawang, Jawa Barat.
2 Balai Besar Penelitian Organisme Pengganggu Tumbuhan (BBPOPT), Jl. Raya Kaliasin Tromol Pos 1, Jatisari, Pangulah Utara, Kecamatan Kotabaru, Kabupaten Karawang, Jawa Barat.
*e-mail:lutfiafifah@staff.unsika.ac.id

## ABSTRACT
One of the factors that affect the decrease in yield and quality of sweet potatoes is the attack of the pest  Cylasformicarius.  The  entomopathogenic  fungi  Lecanicilliumlecanii  is  one  of  the  biological agents that can be used to control various types of insect pests. This study aimed to determine the effect  of  the  application  of  the  entomopotagenic fungi  L.  lecanii  to  control  C. formicarius  imago. The  method  used  in  this  research  was  the  experimental  method  with  a  single  factor  Completely Randomized  Design  (CRD)  consisting  of  4  treatments  in  6  replications:  Control  (Aquades);  10 6 conidia/ml;  10 7 conidia/ml;  10 8 conidia/ml.  Observations  were  made  every  day  for  10  days  after application (HSA) by counting 10 imago C. formicarius that died from being sprayed with 1 ml of suspension of the fungi L. lecanii/treatment. The results showed that the conidia density of L. lecanii 10 8 conida/ml gave the most effective results against  50% mortality of  C. formicarius  with an LT 50 value  of  10,024  days.  Thus,  the  entomopathogenic  fungi  L.  lecanii  as  a  biological  agent  of  C. formicarius deserves to be further developed.
Keywords: Cylasformicarius, Lecanicilliumlecanii, Mortality

## ABSTRAK
Salah  satu  faktor  yang  mempengaruhi  dalam  penurunan  hasil  dan  kualitas  ubi  jalar  adalah serangan  hama  Cylas  formicarius.  Cendawan  entomopatogen  Lecanicillium  lecanii  merupakan salah satu agens hayati yang dapat digunakan untuk mengendalikan berbagai jenis serangga hama. Penelitian  ini  bertujuan  untuk  mengetahui  pengaruh  aplikasi  cendawan  entomopotagen  L.  lecanii untuk  mengendalikan  imago  C.  formicarius.  Metode  yang  digunakan  adalah  metode  eksperimen dan rancangan percobaan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktor tunggal yang  terdiri  dari  4  perlakuan  dalam  6  kali  ulangan  :  Kontrol  (Aquades);  10 6 konidia/ml;  10 7 konidia/ml; 10 8 konidia/ml. Pengamatan dilakukan setiap hari selama 10 hari setelah aplikasi (hsa) dengan  menghitung  10  imago  C.  formicarius  yang  mati  akibat  disemprot  dengan  suspensi cendawan  L.  lecanii  sebanyak  1  ml/perlakuan.  Hasil  penelitian  menunjukkan  bahwa  kerapatan konidia L. lecanii 10 8 konida/ml memberikan hasil paling efektif terhadap mortalitas C. formicarius sebesar 50% dengan nilai  LT 50 sebesar 10,024 hari. Dengan demikian, cendawan entomopatogen L. lecanii sebagai agens hayati C. formicarius layak untuk dikembangkan lebih lanjut.
Kata kunci: Cylasformicarius, Lecanicillium lecanii, Mortalitas

## PENDAHULUAN
Gangguan hama merupakan salah satu faktor  permasalahan  yang  dihadapi  petani
dalam peningkatan hasil produksi ubi jalar(Lapinangga  dan  da  Lopez,  2018). Kumbang penggerek Cylas formicarius merupakan  salah  satu  hama  penting  pada  ubi
e- ISSN: 2715-033X                 JURNAL AGROPLASMA, Vol. 9 No. 2, Oktober  2022: 231-238
jalar yang menyerang pada musim kemarau(Indiati  dan  Saleh,  2010)  dan  dapat menurunkan  produksi  serta  kualitas  ubi  jalar saat pertanaman maupun di gudang penyimpanan(Powel et  al .,  2001).  Gejala kerusakan  yang  diakibatkan  oleh  kumbang penggerek ini ditandai dengan adanya lubang- lubang  kecil  akibat  gerekan  pada  permukaan kulit, mengeluarkan bau busuk yang khas, dan rasa  umbi  yang  pahit  akibat  terbentuknya senyawa furanoterpen , coumarin , dan polifenol sehingga umbi tidak dapat dikonsumsi(Artanti et al ., 2013). BerdasarkanPusat  Data  dan  Sistem  Informasi Kementerian Pertanian (2016) tercatat
perkembangan  ketersediaan  per  kapita  ubi jalar  di  Indonesia  pada  tahun  1993  hingga 2020 cenderung mengalami penurunan dengan rata-rata sebesar 0,06% atau ketersediaan  ubi  jalar  rata-rata  sebesar  8,17 kilogram  per  kapita  per  tahun.  Pengendalian kumbang  penggerek  yang  dilakukan  oleh petani  sampai  saat  ini  hanya  mengandalkan penggunaan pestisida kimia. MenurutPrayogo (2011) lebih dari 90% petani mengaplikasikan pestisida kimia di  lapangan dengan dosis dan volume  semprot  yang  tidak  sesuai  anjuran sehingga  memberikan  dampak  negatif  seperti resistensi  hama  sasaran,  resurjensi  hama sekunder, terbunuhnya musuh alami, biodiversitas  menurun,  dan  bahaya  kesehatan manusia  serta  ternak  jika  terkena  kontak langsung.
Melihat  banyaknya  dampak  negatif yang  ditimbulkan  oleh  penggunaan  pestisida kimia,  maka  diperlukan  pengelolaan  untuk menekan penggunaan pestisida kimia tersebut yaitu dengan menerapkan program pengendalian  secara  terpadu  atau  PHT (Pengendalian  Hama  Terpadu)  yang  lebih selektif, efektif, berkelanjutan, dan berwawasan  lingkungan  (Fajarani et  al ., 2021).  Salah satu PHT yang dapat digunakan adalah  pengendalian  secara  biologis  dengan pemanfaatan  agens  hayati  yang  meliputi parasitoid,  predator,  dan  patogen.  Cendawan entomopatogen  termasuk  dalam  kelompok patogen yang dapat digunakan untuk pengendalian hama tanaman dengan keuntungan  yang  dapat  diperoleh  antara  lain kapasitas reproduksi yang tinggi, siklus hidup
yang  pendek,  dan  memiliki  ketahanan  yang baik dalam kondisi yang tidak menguntungkan(Artanti et al ., 2013). Terdapat beberapa jenis cendawan entomopatogen  yang  telah  dikembangkan untuk mengendalikan hama tanaman diantaranya Metarhizium  anisopliae yang dapat melumpuhkan otot serangga; Beauveria bassiana yang  dapat  merusak  jaringan serangga;  serta  cendawan Lecanicillium lecanii yang  mampu  memproduksi  toksin seperti dipecolinic  acid dan cyclosporin yang bersifat  insektisidal  sehingga  sangat  toksik terhadap  serangga  inang(Fadhilah  dan  Asri, 2019).
Lecanicillium lecanii merupakan salah satu cendawan entomopatogen yang digolongkan  dalam  divisi Ascomycota dan ordo Hypocreales ,  ditemukan  pertama  kali tahun  1998  oleh  Zimmerman,  memiliki kisaran  inang  luas,  bersifat  kosmopolit  atau mudah  ditemukan  di  daerah  tropis  maupun sub  tropis,  dan  menghasilkan  metabolit sekunder  berupa bassionolidae dan  asam dipercolinic yang bersifat insektisidal sehingga  mampu  menginfeksi  beberapa  jenis serangga  inang  diantaranya  meliputi  Ordo Orthoptera,
Hemiptera, Lepidoptera, Thysanoptera  dan  Coleoptera(Khaerati  dan Indriati,  2015).  Menurut  hasil  penelitianPutra et  al .,  (2013)  kerapatan  konidia L.  lecanii 10 8 /ml  efektif  dalam  menekan  populasi  hama
Bemisia tabaci dengan mortalitas tertinggisebesar 68,5% sehingga dapat menekan  intensitas  serangan  virus Cowpea Mild  Mottle  Virus (CMMV)  pada  tanaman kedelai.  Sementara  hasil  penelitianIndriati et al ., (2015)  menunjukkan cendawan L. lecanii dapat  menginfeksi  dan  mematikan  nimfa Helopeltis antonii sebesar 65% di laboratorium  dan  mengurangi  tingkat  makan sebesar 83,04%.
Salah  satu  faktor  untuk  meningkatkan infektivitas  cendawan  entomopatogen  dalam pengendalian hama yaitu melakukan kombinasi  dengan  teknologi  pengendalian lain seperti ekstrak nabati untuk meningkatkan perkecambahan konidia cendawan sehingga dapat mempercepat penetrasi terhadap serangga inang(Da Silva et al ., 2009). Selain itu, keberhasilan
e- ISSN: 2715-033X                 JURNAL AGROPLASMA, Vol. 9 No. 2, Oktober  2022: 231-238
pengendalian hama dengan cendawan entomopatogen juga ditentukan oleh kerapatan  konidia  yang  diaplikasikan,  yaitu jumlah  konidia  dalam  setiap milliliter air(Putra et  al .,  2013).  Menurut  hasil penelitianPrayogo (2011)penambahan insektisida  nabati  serbuk  daun  pacar  cina ( Aglaia odorata ), serbuk biji srikaya ( Annona squamosa ),  dan  serbuk  biji  jarak  ( Jatropha curcas L.)    ke  dalam  media  tumbuh  bersifat sinergis karena mampu meningkatkan pertumbuhan dan perkembangan cendawan L. lecanii dan  pada  kerapatan  konidia  10 8 /ml mampu meningkatkan mortalitas hama Riptortus  linearis pada  kedelai.  Lebih  lanjut hasil penelitian Prayogo et al ., (2011) menunjukkan  bahwa  penambahan  minyak nabati  kacang  tanah,  kedelai,  dan  kelapa mampu  meningkatan  efikasi  cendawan L. lecanii terhadap  pengendalian  telur  kepik coklat hingga 40% di lapangan. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui aplikasi kerapatan  konidia  cendawan L.  lecanii yang tepat  dan  mampu  membunuh  kumbang penggerek C. formicarius skala  laboratorium. Dengan  demikian,  penurunan  hasil  produksi ubi  jalar  akibat  kumbang  penggerek  dapat ditekan dan penggunaan pestisida kimia dapat dikurangi.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium  Agens  Hayati,  Balai  Besar Peramalan Organisme Pengganggu Tumbuhan  (BBPOPT)  yang  terletak  di  Jalan Raya  Kaliasin  Tromol  Pos  1,  Jatisari, Pangulah Utara, Kecamatan Kotabaru, Kabupaten  Karawang,  Jawa  Barat.  Penelitian dimulai  dari  bulan  Februari  2022  sampai dengan  Juni  2022.  Metode  penelitian  yang digunakan  adalah  metode  eksperimen  dengan pola Rancangan Acak Lengkap (RAL) Faktor Tunggal  yang  terdiri  4  perlakuan  dan  6 ulangan.  Perlakuan  tersebut  antara  lain Kontrol  (Akuades),  10 6 konidia/ml,  10 7 konidia/ml, dan 10 8 konidia/ml. Data dianalisis  dengan  uji  F  pada  taraf  5%.  Jika hasil  uji  F  berbeda  nyata  maka  dilakukan  uji lanjut Beda Nyata Terkecil (BNT) taraf 5%.
Alat  yang  digunakan  dalam  penelitian
ini  adalah  cawan  Petri,  jarum  N, erlenmeyer , tabung  reaksi, magnetic  stirrer , vortex , suntikan  1  ml, haemocytometer ,  mikroskop binokuler,  toples, thinwall , handsprayer , Laminar  Air  Flow (LAF),  alat  tulis,  dan kamera.  Sedangkan  bahan  yang  digunakan dalam penelitian ini adalah isolat cendawan L. lecanii yang  berasal  dari  BBPOPT,  media Potato  Dextrose  Agar (PDA),  ekstrak  biji tumbuhan  jarak  dan  sirsak,  serangga C. formicarius , dan Akuades steril.
Serangga uji berupa imago C. formicarius yang  diperoleh  dari  perbanyakan dalam  toples  yang  berisi  ubi  jalar  yang terserang  hama  lanas.  Toples  disimpan  di tempat yang gelap dan dijaga kelembapannya agar  tidak  terdapat  genangan  air  sampai muncul imago. Imago yang muncul selanjutnya  dipindahkan  ke  dalam  toples  lain yang berisi ubi segar sebagai pakan. Isolat cendawan L. lecanii diperbanyak  pada  media Potato  Dextrose Agar yang  ditetesi  dengan  ekstrak  biji tumbuhan  jarak  dan  sirsak.  Media  PDA  yang telah  disterilisasi  dituang  ke  dalam  cawan petri sebanyak 10  ml  lalu ditetesi ekstrak biji tumbuhan  jarak  dan  sirsak,  lalu  diamkan media  hingga  padat.  Setelah  itu,  isolat cendawan L.  lecanii diinokulasikan  pada media tersebut dan diinkubasi selama 15 hari. Biakan  cendawan L.  lecanii yang  telah berumur  15  hari  dipanen  konidianya  dengan cara  menambahkan  Akuades  steril  ke  dalam cawan petri, lalu konidia dilepaskan menggunakan  jarum  N  dan  dimasukkan  ke dalam erlenmeyer yang  berisi  100  ml Akuades  steril.  Setelah  itu,  diaduk  selama  15 menit  dengan magnetic  stirrer, lalu  diambil sebanyak 0,2 ml menggunakan suntikan steril untuk diteteskan pada bidang Haemocytometer .
Perhitungan konidia dilakukan dengan mikroskop binokuler pada 5 (lima)  kotak  secara  zigzag  dari  sisi  kiri  ke kanan.  Hasil  perhitungan  kerapatan  konidia tertinggi  digunakan  untuk  aplikasi  terhadap hama C. formicarius .
Suspensi  cendawan L.  lecanii dengan kerapatan  konidia  tertinggi  diambil  sebanyak 1 ml ke dalam tabung reaksi yang berisi 9 ml Akuades  steril,  lalu  diaduk  selama  3  menit menggunakan vortex .  Pengenceran  tersebut
dilakukan hingga diperoleh kerapatan konidia 10 6 konidia/ml,  10 7 konidia/ml,  dan  10 8 konidia/ml. Hasil dari pengenceran dimasukkan  ke  dalam handsprayer yang berukuran 50 ml sebanyak 1 ml/perlakuan.
Pengamatan dilakukan dengan
menghitung  10  imago C.  formicarius yang mati  akibat  disemprot  dengan  suspensi cendawan L.  lecanii pada  hari  ke  1  –  10  hsa (hari setelah aplikasi). Presentase kematian C. formicarius dihitung  dengan  menggunakan rumus(Afandhi et al ., 2020):
M = n N x 100%
Keterangan: M  = presentase mortalitas n = jumlah serangga yang mati akibat terinfeksi cendawan
N  = jumlah serangga yang diamati

## HASIL DAN PEMBAHASAN

## Mortalitas Cylas formicarius
Tabel 1.Rata-rata presentase mortalitas C. formicarius selama 10 hari setelah aplikasi pada percobaan uji berbagai konsentrasi cendawan entomo pathogen L. lecanii . Kerapatan Konidia (konidia/ml) Mortalitas C. formicarius (%) K (aquades) 13,33c 10 6 26,67b 10 7 38,33ab 10 8 50,00a KK (%) 16,84 Keterangan : Nilai  rata-rata  yang  dinotasikan  dengan  huruf  yang  sama  pada  kolom  yang  sama menunjukkan  tidak  berbeda  nyata  menurut  BNT 5%  setelah  ditransformasi √x + 0,05 .  KK (Koefisien Keragaman).
Berdasarkan  (Tabel  1),  diketahui terdapat  pengaruh  nyata  antara  aplikasi suspensi  3  (tiga)  tingkat  kerapatan  konidia cendawan L.  lecanii beserta  kontrol  terhadap mortalitas C. formicarius . Hasil penelitian  ini menunujukkan bahwa suspensi dengan kerapatan konidia 108
konidia/ml memberikan  hasil  mortalitas C.  formicarius lebih  tinggi  sebesar  50%  dibandingkan dengan kerapatan konidia 107 konidia/ml dan 106  konidia/ml  sebesar  38,33%  dan  26,67%. Kemampuan L.  lecanii dalam  mengakibatkan mortalitas  pada  imago C.  formicarius secara keseluruhan  terlihat  bahwa  semakin  tinggi nilai  kerapatan  konidia  maka  semakin  tinggi pula  presentase  mortalitas  dari  serangga C. formicarius. Tingkat kerapatan konidia cendawan L. lecanii yang semakin tinggi akan menghasilkan  miselium  dan  konidia  lebih banyak pula  yang tumbuh dan kontak dengan tubuh  larva S.  litura ,  sehingga  peluang konidia  untuk  menempel,  berkecambah,  dan
melakukan  penetrasi  ke  dalam  tubuh  larva S. litura akan  semakin  lebih  banyak(Suhairiyah et al ., 2013).
Menurut  Sari  dan  Thursana  (2012) menjelaskan bahwa cendawan entomopatogen dalam  menginfeksi  serangga  sasaran  terdapat 4 (empat) tahap yaitu, tahap pertama inokulasi dan kontak antara propagul cendawan dengan tubuh  serangga  sasaran.  Tahap  kedua  adalah penempelan  dan  perkecambahan  propagul cendawan  entomopatogen  pada  integumen serangga.  Tahap  ketiga  ialah  penetrasi  dan invasi  pada  tubuh  serangga  dengan  bantuan enzim  dan  toksin  yang  dimiliki  cendawan entomopatogen yang diikuti dengan pembentukan tabung kecambah (appresorium). Tahap keempat yaitu dekstruksi pada titik penetrasi dan terbentuknya  blastospora  yang  kemudian beredar  ke  dalam  haemolimfa  membentuk hifa  sekunder  untuk  merusak  jaringan  tubuh lainnya.  Ketika  cendawan  sudah  mulai
e- ISSN: 2715-033X                 JURNAL AGROPLASMA, Vol. 9 No. 2, Oktober  2022: 231-238
berkembang  di  dalam  tubuh  serangga,  maka akan  menimbulkan  gejala  sakit  seperti gerakan  yang  melambat,  tidak  terkoordinasi dan  akhirnya  menyebabkan  kematian.  Hasil penelitian  menunjukkan C.  formicarius yang
mati terinfeksi cendawan L. lecanii menunjukkan  ciri  morfologis  tubuh  kaku, mengeras,  dan  permukaan  tubuh  akan mengerut  serta  mengeluarkan  miselia  melalui segmen tubuhnya
(Gambar 1).
Gambar  1.  Imago  C.  formicarius  yang  mati  akibat aplikasi  suspensi  L.  lecanii  (a)  bagian  dorsal,  (b)  bagian ventral.
Tingkat  mortalitas C.  formicarius yang  cenderung  rendah  pada  penelitian  ini diduga  dipengaruhi  oleh  faktor  suhu  dan kelembapan  yang  kurang  mendukung  pada saat pengamatan percobaan. Menurut Bidochka et al. , (2000) cendawan entomopatogen  membutuhkan  suhu  optimum berkisar  22-27 o C  dengan  kelembapan optimum  di  atas  90%  untuk  melakukan perkecambahan.  Pada  kelembapan  yang semakin  tinggi  cendawan  semakin  virulen, sehingga  jika  kelembapan  udara  lebih  rendah dari  86%  virulensi  cendawan  akan  semakin menurun.Faktor  lain  yang  menyebabkan rendahnya  tingkat  mortalitas  imago C. formicarius adalah  umur  simpan  cendawan entomopatogen.Hastuti et al., (2017) menjelaskan  semakin  lama  umur  simpan cendawan  entomopatogen  maka  cendawan akan kehabisan cadangan nutrisi. Selanjutnya, konidia  cendawan  akan  membentuk  struktur khusus  untuk  menghindari  lingkungan  yang tidak  sesuai  dan  beberapa  organ  cendawan tidak  efektif  lagi  apabila  digunakan  sebagai organ  infektif  terhadap  hama  sasaran.Tekstur
dari  integumen  imago C.  formicarius yang cukup  keras  dapat  menjadi  salah  satu penyebab sulitnya penetrasi cendawan entomopatogen  ke  dalam  tubuh  serangga inang.  Mekanisme  penetrasi  cendawan  ke dalam tubuh serangga sangat dipengaruhi oleh struktur  kutikula  serangga  seperti  ketebalan, sklerotisasi,  kandungan  zat  anti  jamur,  dan substansi nutrisi, sehingga  jika  semakin keras dan tebal kulit maka cendawan entomopatogen  maka  semakin  sulit  untuk menginfeksi tubuh inangnya(Anggraeni, 2018).
Berdasarkan  hasil  analisi  regresi  pada Gambar  2,  hubungan  antara  mortalitas C. formicarius dengan kerapatan konidia menunjukkan  nilai  R 2 sebesar  0,818  dengan nilai P value yaitu 0,28. Data ini merepresentasikan  bahwa  kerapatan  konidia mampu memberikan informasi atau menjelaskan sebesar 81,8% terhadap mortalitas C.  formicarius dan  kerapatan konidia  tidak  berpengaruh  nyata  terhadap mortalitas
C. formicarius . a b
e- ISSN: 2715-033X                 JURNAL AGROPLASMA, Vol. 9 No. 2, Oktober  2022: 231-238
Gambar 2. Regresi hubungan antara kerapatan kondia dengan mortalitas C. formicarius .

## Lethal Time (LT
50 )
Tabel 2. Analisis nilai probit LT 50 kerapatan konidia L. lecanii terhadap mortalitas C. formicarius .
Kerapatan (konidia/ml) LT 50 K 30,975 10 6 21,975 10 7 14,327 10 8 10,024
Berdasarkan  (Tabel  2),  diketahui bahwa  uji  kerapatan  konidia L.  lecanii terhadap nilai kematian C. formicarius selama 10  hsa  menunjukkan  nilai  rata-rata  LT 50 tertinggi  yaitu  pada  kerapatan  10 6 konidia/ml dengan  21,975  hari  dan  nilai  rata-rata  LT 50 terendah  yaitu  pada  kerapatan  10 8 konidia/ml dengan  10,024  hari.  Hasil  penelitian  ini menunjukkan semakin tinggi kerapatan konidia  cendawan L.  lecanii maka  semakin rendah  nilai  LT 50 imago C.  formicarius karena dengan kerapatan yang tinggi memungkinkan  semakin  banyaknya  konidia yang  menempel  pada  tubuh  imago C. formicarius dan  penetasi  yang  terjadi  lebih cepat,  sehingga  potensi  imago  mengalami kematian  semakin  cepat  dan  semakin  besar jumlahnya.
Anshori  (2017)  dalam  penelitiannya menunjukkan nilai LT 50 cendawan B. bassiana dan L. lecanii masing-masing adalah
4,67 dan 8,20 yang berarti pada kerapatan 10 9 konidia/ml  mampu  mematikan  50%  nimfa instar I S. annulicornis dalam waktu 4,67 hari terinfeksi  oleh B.  bassiana dan  8,20  hari terinfeksi oleh L. lecanii . Keefektifan cendawan  entomopatogen  tersebut  dalam menginfeksi serangga inang dapat dipengaruhi  oleh  kerapatan  spora,  frekuensi aplikasi,  umur  inang,  tempat  penyimpanan cendawan entomopatogen, dan media biakan.

## KESIMPULAN
Kerapatan konidia cendawan L. lecanii paling  efektif  terdapat  pada  kerapatan 10 8 konidia/ml  dengan  memberikan  hasil mortalitas C.  formicarius sebesar  50%  dan LT50 sebesar 10,024 hari.
e- ISSN: 2715-033X                 JURNAL AGROPLASMA, Vol. 9 No. 2, Oktober  2022: 231-238

## UCAPAN TERIMAKASIH
Terima  kasih  kepada  seluruh  pegawai
Balai Besar Peramalan Organisme Pengganggu Tumbuhan (BBPOPT) khususnya  pegawai  Laboratorium  Agens Hayati yang
telah memfasilitasi, membimbing,  dan  membantu  dalam  kegiatan penelitian yang dilaksanakan.

## DAFTAR PUSTAKA
Afandhi,  A.,  Pratiwi,  V.  R.,  Hadi,  M.  S., Setiawan,  Y.,  dan  Puspitarini,  R.  D. 2020.  Suitable  combination  between
Beauveria bassiana (Balsamo) vuillemin and  four  plant  leaf  extracts  to  control Spodoptera  litura (fabricius). Agrivita . 42(2) : 341–349. https://doi.org/10.17503/agrivita.v42i2.2 678. Anggraeni, Y. 2018. Uji Patogenisitas Jamur Entomopatogen  Lecanicillium  lecanii dan  Metarhizium  anisopliae  Terhadap Hama Phyllotreta striolata F. (Coleoptera: Chrysomelidae) . Universitas Brawijaya.
Anshori,  M.  Y.  A.  2017.  Infektivitas
Beauveria  bassiana dan Lecanicillium lecanii terhadap Sycanus  annulicornis Dohrn (Hemiptera : Reduvidae). Departemen  Proteksi  Tanaman,  Fakultas Pertanian,  Institut  Pertanian  Bogor, Bogor. Artanti,  D.,  Isnawati,  Trimulyono,  G.,  dan Prayogo, Y. 2013. Cendawan Entomopatogen Beauveria bassiana dalam Mengendalikan  Telur  Hama
Penggerek Ubi Jalar ( Cylas formicarius ). LenteraBio .2(1) : 43–48. http://ejournal.unesa.ac.id/index.php/lent erabio.
Bidochka, M. J., Kamp,  A. M.,  dan Croos, J. 2000. Insect  Pathogenic  Fungi:  From Genes To Populations . Da  Silva,  R.,  Neves,  P.,  Santoro,  P.,  dan
Cavaguchi, S. 2009. Effect of Agrochemicals  Based  on  Vegetable  and Mineral  Oil  on  the  Viability  of Entomopathogenic Fungi Beauveria bassiana (Bals.) Vuillemin, Metarhizium
anisopliae
(Metsch.) Sorokin and Paecilomyces sp. Bainier. BioAssay .1 (0) : 1–5. https://doi.org/10.14295/ba.v1.0.33. Fadhilah,  L.  N.,  dan  Asri,  M.  T.  2019. Keefektifan Tiga Jenis Cendawan Entomopatogen  terhadap  Serangga  Kutu Daun Aphis gossypii (Hemiptera: Aphididae) pada Tanaman Cabai. LenteraBio . 8(1) : 56–61. http://ejournal.unesa.ac.id/index.php/lent erabio. Fajarani,  A.  D.,  Afifah,  L.,  dan  Surjana,  T. 2021. Seleksi Media Perbanyakan
Cendawan  Entomopatogen Metharizium rileyi dan  Efikasinya  Terhadap  Hama Kumbang Tepung ( Tribolium castaneum ). Jurnal Agrotek Indonesia .6(1) : 44–53. Hatuti, D., Rusbana, T. B., dan Hidayatullah, D. N., 2017. Pengaruh Lama Penyimpanan Jamur Metarhizium anisopliae Terhadap  Mortalitas  Ulat Grayak ( Spodoptera litura F.) di Laboratorium. Jurnal Agroekotek . 9 (1) :
17 - 27.
Indiati, S.,  dan Saleh, N. 2010. Hama Boleng
Pada Tanaman Ubi Jalar dan Pengendaliannya. Buletin  Palawija .19  : 27–37.
Indriati, G., Samsudin, dan Amaria, W. 2015. Potensi Lecanicillium  lecanii Untuk Pengendalian Helopeltis  antonii Pada Tanaman  Teh. Jurnal  TIDP .2(2)  :  99– 106.
Khaerati  dan  Indriati,  G.  2015. Lecanicillium lecanii (Ascomycota: Hypocreales)
Sebagai  Agens  Hayati  Pengendali  Hama dan  Penyakit  Tanaman. SIRINOV .3(2) :93–102.
Lapinangga,  N.  J.,  dan  da  Lopez,  Y.  2018.
Pemanfaatan Bahan Nabati Lokal
Berefek  Pestidida  untuk  Mengendalikan Hama Cylas  formicarius pada  Tanaman Ubi Jalar. Agrovigor . 11(1) : 34–38.
Powel,  K.  .,  Haertemink,  A.  .,  Egenae,  J.  .,
Walo,  C.,  dan  Poloma,  S.  2001. Sweet
Potato Weevil (Cylas formicarius) Incidence  in  the  Humid  Lowlands  of PNG . 736–745.
https://www.researchgate.net/publication
/40119998.
Prayogo,  Y.  2011.  Sinergisme  Cendawan
Entomopatogen Lecanicillium lecanii dengan  Insektisida  Nabati  Untuk Meningkatkan Efikasi Pengendalian
Telur  Kepik  Coklat Riptortus  linearis
Pada  Kedelai. Jurnal  HPT  Tropika .
11(2) : 166–177.
Prayogo,  Y.,  Santoso,  T.,  Kartosuwondo,  U., dan  Sudirman,  L.  I.  2011.  Peningkatan Efikasi  Cendawan Lecanicillium  lecanii
untuk Mengendalikan Telur Hama Kepik Coklat pada Kedelai. Penelitian Pertanian Tanaman Pangan . 30(1) : 58–
70.
Pusat Data dan Sistem Informasi Kementerian Pertanian.  2016. Outlook  Komoditas
Pertanian Sub Sektor Tanaman Pangan .
Putra, G. M., Hadiastono, T., Afandhi, A., dan
Prayogo,  Y.  2013.  Patogenisitas  Jamur Entomopatogen Lecanicillium  lecanii
(Deuteromycotina;
Hyphomycetes) Terhadap Bemisia  tabaci (G.)  Sebagai
Vektor Virus Cowpea Mild Mottle Virus (CMMV) Pada Tanaman Kedelai. Jurnal
HPT .1(1) :27–39.
Sari,  K.  P.,  dan  Thursana,  Y.  2012.  Efikasi
Lecanicillium
lecanii , Metarhizium anisopliae , dan Beauveria bassiana untuk  Pengendalian    Hama
Kepik  Hijau. Prosiding  Seminar  Hasil Penelitian  Tanaman Aneka  Kacang  Dan
Umbi . 680–686.
Suhairiyah,  Isnawati,  dan  Ratnasari,  E.  2013. Pengaruh Pemberian Cendawan Lecanicillium lecanii terhadap Mortalitas
Ulat  Grayak  ( Spodoptera  litura )  Secara In  Vitro . LenteraBio .  2(3)  :253–257.
http://ejournal.unesa.ac.id/index.php/lent erabio.