*  Penulis  untuk  korespondensi.  e-mail:  eny.widajati61@gmail. com PENDAHULUAN
Cabai merah ( Capsicum annuum L .) adalah tanaman hortikultura yang mempunyai peranan penting di Indonesia. Salah  satu  penyakit  yang  menyerang  pertanaman  cabai adalah  penyakit  antraknosa.  Penyakit  ini  disebabkan  oleh cendawan genus Colletotrichum yaitu species Colletotrichum acutatum. Penyakit  ini  menyerang  pertanaman  di  daerah
tropis dan subtropis. Ivanovic (2007) menyatakan, penyakit antraknosa  cepat  berkembang  dan  menimbulkan  kerugian yang parah terutama kondisi cuaca yang panas dan hujan yang berkepanjangan . Hasil penelitian Syukur et al . (2013) tentang eksplorasi cendawan penyebab antraknosa di Pulau Sumatera, Jawa dan Papua menunjukkan bahwa sebanyak 42 isolat dari 67 isolat adalah C. capsici dan 25 isolat adalah C. acutatum / C. gloeosporioides . Coating benih merupakan cara perbaikan mutu benih yang  bermanfaat  mengendalikan  penyakit  terbawa  benih selama  penyimpanan  dan  meningkatkan  perkecambahan.

## Aplikasi Bakteri Probiotik untuk Meningkatkan Mutu
Fisiologi dan Kesehatan Bibit Cabai ( Capsicum annuum L.)
Application of Probiotic Bacteria to Increase the physiological Quality and Health of Chili Pepper (Capsicum annuum L.) Seedlings
Anna Tefa 1,2 , Eny Widajati 3* , Muhamad Syukur 3 , dan Giyanto 4
1 Program Studi Ilmu dan Teknologi Benih, Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor 2 Jurusan Agroteknologi, Fakultas Pertanian, Universitas Timor Jl. Km. 9 Kelurahan Sasi, Kecamatan Kota Kefamenanu Kabupaten Timor Tengah Utara, Nusa Tenggara Timur 85613, Indonesia
3 Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor (Bogor Agricultural University), Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680, Indonesia 4 Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor (Bogor Agricultural University), Jl. Meranti, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680, Indonesia
Diterima 31 Maret 2015/Disetujui 1 September 2015

## ABSTRACT
The use of probiotic bacteria as biocontrol agents is one of the methods of controlling anthracnose disease caused by Colletotrichum acutatum. The objective of this research was to suppress the infection of C. acutatum and increase chilli pepper seedling vigour. The research involved factorial experiments arranged in a completely randomized design with two factors. The first factor was seed coating involving six treatments, i.e., control, seed coating without bacteria, seed coating with Bacillus sp., Pseudomonas sp., Actinomycetes sp, and fungicide. The second factor was the seed storage period where six storage periods were experimented, i.e., 0, 1, 2, 3, 4, 5, and 6 months. The results showed that the coating treatment of Bacillus sp., Pseudomonas sp., and Actinomycetes sp. improved germination, growth rate and number of leaves and reduced the incidence of attacks and infection of hypocotyls at 5 month storage period.
Keywords: Actinomycetes sp., Bacillus sp., Pseudomonas sp., seed coating, storage period

## ABSTRAK
Penggunaan agens hayati berupa aplikasi bakteri probiotik merupakan salah satu cara untuk mengendalikan penyakit antraknosa yang disebabkan  oleh cendawan Colletotrichum acutatum. Tujuan penelitian ini adalah menekan infeksi C. acutatum dan meningkatkan vigor bibit cabai. Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap pola faktorial yang terdiri atas dua faktor. Faktor pertama adalah perlakuan pelapisan benih yang terdiri atas enam perlakuan yaitu kontrol, pelapisan benih tanpa bakteri, pelapisan benih dengan Bacillus sp., Pseudomonas sp., Actinomycetes dan fungisida. Faktor kedua adalah periode simpan yang terdiri atas enam perlakuan yaitu 0, 1, 2, 3, 4 dan 5 bulan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa perlakuan pelapisan Bacillus sp., Pseudomonas sp., dan Actinomycetes sp. meningkatkan daya berkecambah, kecepatan tumbuh dan jumlah daun serta menurunkan kejadian serangan, dan hipokotil terinfeksi pada periode simpan 5 bulan.
Kata kunci: Actinomycetes sp., Bacillus sp., Pseudomonas sp., pelapisan benih, periode simpan
Menurut  Sari et  al .  (2013) seed  coating dapat  menjadi pengganti  polong  untuk  melindungi  benih  kacang  tanah dari pengaruh buruk lingkungan selama penyimpanan, serta berfungsi sebagai pembawa zat aditif diantaranya fungisida, bakteri,  antioksidan  maupun  zat  pengatur  tumbuh  yang bersifat sintetik maupun hayati.
Bakteri  probiotik  dapat  menghambat  multiplikasi patogen  dengan  mengeluarkan  antibiotik  dan  mengurangi populasi  patogen  melalui  hiperparasitisme  (Zivkovic et al .,  2010).  Hasil  penelitian  Sutariati  dan  Safuan  (2012), penggunaan  rizobakteri Bacillus  polymixa BG25,
Pseudomonas fluorescens PG01  dan Serratia liquefaciens SG01  efektif  meningkatkan  kualitas  benih,  pertumbuhan dan  hasil  cabai.  Menurut  Noviana  dan  Raharjo  (2009), Bacillus sp. terbukti dapat melarutkan fosfat yang berperan dalam  pertumbuhan  tanaman,  sehingga  bakteri  ini  dapat dimanfaatkan  sebagai  agen  yang  diinokulasikan  dalam pupuk  hayati. Actinomycetes diketahui  menghasilkan antibiotik dan enzim kitinase yang dapat merusak dinding sel cendawan yang mengandung kitin (Mujoko et al., 2005). Hasil penelitian Nurhayati et al . (2012) menunjukkan bahwa Pseudomonas fluorescens asal tanah dan akar tanaman jagung  sehat  merupakan  isolat  antagonis  yang  paling baik  menekan  pertumbuhan  dan  perkembangan Fusarium oxysporum patogen penyakit layu pada pisang.  Upaya yang dapat dilakukan untuk mencegah penurunan viabilitas dan vigor benih selama penyimpanan adalah dengan pelapisan benih  ( seed  coating )  dengan  aplikasi  bakteri  probiotik. Penelitian ini bertujuan untuk meningkatkan mutu fisiologi dan kesehatan bibit cabai melalui aplikasi bakteri probiotik pada proses coating benih.

## BAHAN DAN METODE
Penelitian ini dilaksanakan pada Bulan Januari sampai Juli 2014, di Laboratorium Fisiologi dan Kesehatan Benih, Departemen Agronomi  dan  Hortikultura,  IPB  dan  Rumah Kaca Cikabayan.
Penelitian  disusun  menggunakan  rancangan  acak lengkap (RAL) faktorial, yang terdiri atas dua faktor. Faktor pertama adalah perlakuan coating benih yaitu tanpa coating , coating tanpa bakteri, coating dengan Bacillus sp., coating dengan Pseudomonas sp., coating dengan Actinomycetes sp., dan coating dengan fungisida. Faktor kedua adalah periode simpan yaitu periode simpan 0, 1, 2, 3, 4, dan 5 bulan.
Benih  yang  digunakan  adalah  varietas  Seloka  IPB yang berasal dari buah yang 100% buahnya berwarna merah. Bagian yang digunakan sebagai benih berasal dari biji yang berada  dibagian  tengah  buah.  Biji  yang  terletak  <  5cm dari pangkal dan ujung buah dibuang. Tahapan percobaan dimulai dengan melakukan inokulasi C. acutatum pada benih cabai  dengan  kerapatan  populasi  cendawan  10 6 cfu mL -1 (Nurhayati, 2011).  Inokulasi dilakukan  dengan merendam benih cabai selama 30 menit dan diinkubasi selama 4 hari untuk mencapai infeksi tertinggi. Benih kemudian di coating sesuai  perlakuan  pada  hari  kelima  setelah  inkubasi  dan dikeringkan  dalam laminar  air  flow hingga  kadar air 10.6%  lalu  dikemas  dalam  plastik polypropilen 0.8  mm
sesuai  perlakuan  dan  ulangan,  selanjutnya  disimpan  pada suhu kamar ±28 ºC dengan RH 56% selama periode simpan 0, 1, 2, 3, 4, dan 5 bulan.
Kerapatan ketiga bakteri yang digunakan untuk coating 0.2x10 8 cfu mL -1 . Proses pelapisan benih dilakukan dengan mencampur bahan perekat natrium alginat dan xantan gum masing-masing 2.5 g untuk 100 mL isolat bakteri. Volume suspensi  bakteri  untuk coating 20  mL  untuk  10  g  benih. Teknik coating dilakukan dengan mencampur benih dengan suspensi bakteri dan perekat sambil diaduk selama 20 menit hingga tercampur merata, lalu disaring dengan saringan 0.5 mesh untuk menghilangkan larutan yang tersisa (Setiyowati et al ., 2007). Pengujian di rumah kaca menggunakan media tanam campuran tanah dan pupuk kompos dengan perbandingan 1:1 dalam  polibag  ukuran 5 cm x 15 cm. Sebelum digunakan, media  disterilisasi  pada  suhu  121  ºC  selama  20  menit dengan tekanan 1 atm dengan tujuan menghindari serangan patogen tular tanah atau  mikroorganisme lain yang dapat menyebabkan penyakit. Setiap perlakuan ditanam 25 benih, empat  ulangan.  Pengaruh  perlakuan  terhadap  vigor  benih cabai  dievaluasi  dengan  mengamati  daya  berkecambah dan  kecepatan  tumbuh.    Daya  berkecambah  diperoleh dengan  mengamati  persentase  benih  yang  berkecambah normal pada akhir pengamatan yaitu 14 hari setelah tanam (HST). Kecepatan  tumbuh diamati setiap hari hingga hari ke 14 HST. Pengaruh perlakuan terhadap kesehatan benih dievaluasi dengan mengamati kejadian serangan antraknosa (%),  rebah bibit (%), dan hipokotil terinfeksi C. acutatum (%).  Kejadian serangan dan rebah kecambah diamati setiap hari  hingga  14  HST  .  Hipokotil  terinfeksi  diamati  pada akhir pengamatan yaitu 14 HST dengan metode blotter test . Pengamatan respon tanaman terhadap perlakuan yang diuji menggunakan  peubah  tinggi  bibit  (cm)  dan  jumlah  daun (helai), diamati pada 14 HST.
Data  hasil  percobaan  dianalisis  menggunakan  uji  F dengan  uji  lanjut Duncan  Multiple  Range  Test (DMRT) pada taraf nyata 5%.

## HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil analisis ragam menunjukkan perlakuan coating berpengaruh nyata terhadap daya berkecambah, kecepatan tumbuh,  jumlah  daun,  hipokotil  terinfeksi  dan  kejadian serangan. Periode simpan berpengaruh nyata pada peubah daya berkecambah, kecepatan tumbuh, tinggi bibit, jumlah daun, kejadian serangan dan rebah bibit, sedangkan interaksi perlakuan coating dan periode simpan mempengaruhi daya berkecambah, kecepatan tumbuh, jumlah daun dan kejadian serangan (Tabel 1).
Perlakuan seed coating pada benih yang disimpan 5 bulan menunjukkan bahwa daya berkecambah benih dengan perlakuan coating Bacillus sp. 81.33% berbeda tidak nyata dengan perlakuan coating Pseudomonas sp., Actinomycetes sp.,  dan  perlakuan coating tanpa  bakteri  (Tabel  2).  Hal ini  memberi  indikasi  bahwa  isolat  bakteri Bacillus sp., Pseudomonas sp., dan Actinomycetes sp., diduga berpotensi meningkatkan daya berkecambah benih cabai.
Vigor  kekuatan  tumbuh  benih  dapat  dilihat  dari besarnya  nilai  kecepatan  tumbuh  benih  (K CT ).  Kecepatan tumbuh  menunjukkan  jumlah  benih  yang  berkecambah normal  setiap  harinya  (Muchtar et  al .,  2014).  Kecepatan tumbuh benih yang telah disimpan 5 bulan pada perlakuan coating  Bacillus sp.  dan Actinomycetes sp.  lebih  tinggi
dibandingkan coating Pseudomonas sp. (Tabel 3). Kecepatan tumbuh yang tinggi pada perlakuan coating Bacillus sp. dan Actinomycetes sp. dipengaruhi oleh perbedaan kandungan hormon indole acetic acid (IAA) dan giberelin (GA 3 ). Hasil penelitian  Tefa  (2015)  menunjukkan  bahwa    kandungan hormon IAA dan GA 3 pada Bacillus sp. dan Actinomycetes
Tolok ukur Perlakuan dan interaksinya Coating Periode simpan Coating x Periode simpan KK (%) Daya berkecambah (%) * ** * 12.25 Kecepatan tumbuh (KCT) ** ** ** 15.90 Tinggi bibit (cm) tn ** tn 13.87 Jumlah daun (helai) * ** * 9.66 Hipokotil terinfeksi (%) * tn tn 72.52 Kejadian serangan antraknosa (%) * ** * 33.03 Rebah bibit (%) tn ** tn 4.50 Tabel 1. Analisis ragam pengaruh perlakuan coating dan periode simpan terhadap vigor dan kesehatan bibit cabai di rumah kaca
Keterangan: ** = sangat nyata; * = nyata; tn = tidak nyata; KK = Koefisien keragaman
Perlakuan benih Periode simpan (bulan) 0 1 2 3 4 5 Kontrol 69.33bB 88.00abA 93.33aA 82.67abAB 77.33abA 30.67cB Coating tanpa bakteri 80.00abAB 82.67abA 90.67aA 69.33bB 77.33abA 78.67abA Coating Bacillus 90.67aA 86.67aA 92.00aA 85.33aAB 84.00aA 81.33aA Coating Pseudomonas 84.00aAB 90.67aA 88.00aA 78.67aAB 90.67aA 74.67aA Coating Actinomycetes 86.67aAB 92.00aA 82.67aA 84.00aAB 82.67A 76.00aA Coating fungisida 92.00aA 90.67aA 85.33aA 92.00aA 85.33aA 70.67bA
Tabel  2.  Pengaruh  interaksi  perlakuan coating dan  periode  simpan  terhadap  daya  berkecambah  (%)  benih  cabai  pada pengamatan di rumah kaca
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada D Huruf kecil ke samping (dalam satu baris) menunjukkan pengaruh perlakuan periode simpan sedangkan huruf kapital ke bawah (dalam satu kolom) menunjukkan pengaruh perlakuan coating benih
Perlakuan benih Periode simpan (bulan) 0 1 2 3 4 5 Kontrol 6.7bC 10.4aAB 8.9aBC 3.4cCD 1.9cB 1.2dC Coating tanpa bakteri 8.6bBC 9.3abB 10.6aAB 3.6cCD 2.6cB 2.7cAB Coating Bacillus 7.4bBC 9.1abB 10.4aAB 4.7cBC 1.9dB 3.3cdA Coating Pseudomonas 6.3bC 8.7aB 7.0bC 2.3cD 2.2cB 1.9cBC Coating Actinomycetes 9.4bcA 11.1abcA 12.3aA 11.9abA 8.9cA 2.8dAB Coating fungisida 12.2aA 9.9bAB 10.2bAB 5.9cB 1.9dB 1.6dC Tabel 3. Pengaruh interaksi perlakuan coating dan periode simpan terhadap kecepatan tumbuh (% etmal -1 ) benih cabai pada pengamatan di rumah kaca
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada D Huruf kecil ke samping (dalam satu baris) menunjukkan pengaruh perlakuan periode simpan sedangkan huruf kapital ke bawah (dalam satu kolom) menunjukkan pengaruh perlakuan coating benih
sp. lebih tinggi dibandingkan Pseudomonas sp. Kandungan hormon  yang  lebih  tinggi  akan  lebih  cepat  memacu perkecambahan.
Tinggi  bibit  pada  periode  simpan  5  bulan  hanya sebesar  8.45  cm  berbeda  nyata  dengan  periode  simpan  1 dan 2 bulan yang mencapai 10.87 cm dan 10.34 cm (Tabel 4).  Menurut  Justice  dan  Bass  (2002)  laju  perkecambahan dan pertumbuhan kecambah mengalami penurunan seiring terjadinya proses penuaan selama penyimpanan.
Hasil interaksi perlakuan coating dan periode simpan terhadap  jumlah  daun  menunjukkan  bahwa  pada  periode simpan  5  bulan,  perlakuan coating  Bacillus sp., coating Pseudomonas sp.,  dan coating  Actinomycetes sp.,  tidak berbeda  nyata  (Tabel  5).  Peningkatan  jumlah  daun  bibit cabai  pada  perlakuan coating tersebut  karena  adanya kandungan  zat  pengatur  tumbuh  IAA  dan  giberelin  yang terdapat  pada  bakteri  probiotik.  Hasil  penelitian  Tefa (2015) menunjukkan bahwa kandungan hormon IAA pada Actinomycetes sp. 89.5 ppm dan giberelin 92.5 ppm. Kusuma et  al. (2012)  melaporkan  bahwa  giberelin  merupakan  zat pengatur tumbuh yang berperan dalam pertumbuhan daun, mempengaruhi pertumbuhan dan diferensiasi akar. Shahab et  al .  (2009)  menyatakan,  hormon  IAA  merupakan salah satu hormon pertumbuhan tanaman yang berperan
dalam  mengendalikan  proses  fisiologi,  diantaranya pembesaran  dan  pembelahan  sel,  merangsang  benih untuk berkecambah, diferensiasi jaringan dan mengontrol proses  pertumbuhan  vegetatif.  Menurut  Saraswati  dan Sumarno (2008), penggunaan mikroorganisme sebagai agens antagonis memberikan manfaat karena selain menghasilkan enzim  kitinolitik  juga  dapat  menghasilkan  zat  pengatur tumbuh (ZPT) dan menyediakan nutrisi bagi tanaman.
Perlakuan coating dengan  fungisida  (Antracol  70 WP)  mampu  menekan  persentase  hipokotil  terinfeksi menjadi  1.1%  dibandingkan  kontrol  sebesar  2.0%  (Tabel 6).  Fungisida  antracol  mengandung  bahan  aktif  propineb 70%,  berbentuk  tepung  dan  bersifat  kontak,  sehingga menurunkan  persentase  hipokotil  terinfeksi  pada  bibit tanaman cabai. Salah satu sifat dari fungisida sintetik adalah dapat menurunkan populasi patogen dengan cepat sehingga meluasnya serangan patogen dapat dicegah (Munarso et al ., 2006). Hasil penelitian Setiyowati et al . (2007) menunjukkan bahwa  perlakuan seed coating dengan benomil dan tepung curcuma  dalam  menekan  tingkat  infeksi C.  capsici pada hipokotil yang nyata lebih kecil dibandingkan kontrol.
Hasil  analisis  pengaruh  interaksi  perlakuan coating dan periode simpan terhadap kejadian serangan antraknosa pada periode simpan 5 bulan menunjukkan bahwa coating Perlakuan benih Periode simpan (bulan) Rata-rata 0 1 2 3 4 5 Kontrol 7.25 11.13 10.03 9.65 7.39 8.16 8.94 Coating tanpa bakteri 10.81 10.08 10.43 8.87 7.91 7.55 9.27 Coating Bacillus 7.52 12.58 10.72 9.44 7.71 8.77 9.46 Coating Pseudomonas 7.35 9.88 10.52 8.57 8.90 8.67 8.98 Coating Actinomycetes 7.73 11.04 10.41 9.73 9.08 9.39 9.60 Coating fungisida 7.00 10.52 9.95 7.43 8.74 8.18 8.64 Rata-rata 7.94c 10.87a 10.34a 8.99b 8.24bc 8.45bc
Tabel 4. Pengaruh perlakuan periode simpan terhadap tinggi bibit cabai (cm) umur 4 minggu setelah semai
Keterangan: Angka  yang  diikuti  huruf  yang  sama  pada  baris  yang  sama  menunjukkan  hasil  yang  tidak  berbeda  nyata berdasarkan DMRT pada D
Perlakuan benih Periode simpan (bulan) 0 1 2 3 4 5 Kontrol 6.4abAB 7.6aAB 6.7aAB 7.3aA 5.5bB 6.5abB Coating tanpa bakteri 8.1aA 7.2abAB 6.7bAB 6.80bAB 5.7cB 6.8bAB Coating Bacillus 6.3bAB 8.7aA 7.0bA 6.9bAB 6.2bAB 7.1bA Coating Pseudomonas 6.0aB 7.1aB 6.9aA 6.6aAB 6.1aB 7.1aA Coating Actinomycetes 6.2aB 7.5aAB 7.1aA 7.4aA 7.2aA 7.1aA Coating fungisida 5.7bB 7.5aAB 6.5bB 5.9bB 6.4bAB 6.7abAB Tabel 5. Pengaruh interaksi perlakuan coating benih cabai dan periode simpan terhadap jumlah daun (helai) umur 4 minggu setelah semai
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada D Huruf kecil ke samping (dalam satu baris) menunjukkan pengaruh perlakuan periode simpan sedangkan huruf kapital ke bawah (dalam satu kolom) menunjukkan pengaruh perlakuan coating benih
Actinomycetes sp.  mampu  menekan  kejadian  serangan antraknosa sebesar 2.9% tidak berbeda nyata dengan coating Pseudomonas sp. sebesar 4.3% (Tabel 7). Hasil uji antagonis bakteri Bacillus sp., Pseudomonas sp. dan Actinomycetes sp. terhadap C. acutatum menunjukkan bahwa Actinomycetes sp.  memiliki  persentase  penghambatan  56.8%, Bacillus sp.  56.7%  dan Pseudomonas sp.  46.7%  (Tefa,  2015). Keberadaan patogen pada benih dapat menyebabkan benih tidak  dapat  tumbuh.  Patogen  akan  berkembang  sejalan dengan  perkecambahan  benih  sehingga  pengendalian C. acutatum de ngan bakteri probiotik pada benih cabai yang terserang patogen cukup efektif.
Menurut  Nabti et  al .  (2013) Bacillus sp.  dapat menghasilkan siderofor dan beberapa enzim seperti selulase, kitinase, protease dan lipase. Siderofor berperan aktif dalam menekan  pertumbuhan  patogen.  Korzybski et  al .  (2013) menyatakan Actinomycetes sp. mengandung antibiotik seperti picromycin , erythromycin , spiramycin , oleandomycin dan chalcomycin sedangkan Compant et al . (2005) menyatakan Pseudomonas sp.  menghasilkan  antibiotik  berupa  enzim hidrolitik yang memiliki kemampuan antifungi diantaranya enzim  kitinase  dan  glukanase  maupun  senyawa  antibiosis seperti  2,4- diacetylphloroglucinol (DAPG),  pirolnitrin, pyoluterin,  dan  phenazin.  Menurut Asnawi et  al .  (2012), adanya  senyawa  antibiotik  yang  dihasilkan  oleh  bakteri
probiotik menyebabkan terjadinya penekanan pertumbuhan patogen.
Benih  yang  digunakan  dalam  penelitian  ini  sudah diinfeksi  patogen C.  acutatum secara  buatan,  akibatnya benih  mengalami  kegagalan  perkecambahan  dan  rebah kecambah. Fase perkecambahan adalah fase paling rentan bagi tanaman terhadap serangan patogen dan saat yang tepat bagi patogen untuk melakukan penetrasi. Benih yang baru tumbuh memiliki jaringan muda yang rentan terjadi rebah kecambah ( damping off ) (Soekarno et al., 2013). Periode  simpan  berpengaruh  nyata  terhadap  rebah bibit.  Hasil  analisis  menunjukkan  bahwa  semakin  lama benih  itu  disimpan,  semakin  banyak  bibit  yang  rebah, dilihat dari peningkatan jumlah bibit yang rebah mencapai 2.7%  pada  periode  simpan  5  bulan,  sementara  pada  0 bulan simpan hanya 1.7% (Tabel 8). Hal ini terjadi karena C.  acutatum penyebab  antraknosa  dapat  berkembang  saat benih  dalam  tempat  penyimpanan  dan  konidia  cendawan dapat bertahan dalam waktu yang lama. Menurut Wilia et al . (2012) cendawan C. acutatum bersifat laten dan sistemik sehingga  sulit  untuk  pengendaliannya  karena  hifa  yang menginfeksi  terlindung  di  dalam  kutikula  tanaman  inang sehingga  perlakuan coating belum  mampu  menurunkan tingkat rebah bibit. Perlakuan benih Periode simpan (bulan) 0 1 2 3 4 5 Kontrol 3.2cA 3.1cA 3.3cA 4.3bcA 6.3abA 7.8aA Coating tanpa bakteri 2.9bA 3.3bA 3.4abA 4.0abA 5.7aA 5.2abB Coating Bacillus 1.7bA 1.2bB 3.3abA 3.3abA 5.5aAB 5.1aB Coating Pseudomonas 2.6abA 1.2bB 3.5abA 3.9aA 4.5aAB 4.3aBC Coating Actinomycetes 2.4bcA 2.2cAB 3.5abcA 4.2abA 4.5aAB 2.9abcC Coating fungisida 2.6bA 2.2bAB 3.3abA 1.7bA 3.60abB 5.1aB Tabel 7. Pengaruh interaksi perlakuan coating dan periode simpan terhadap kejadian serangan antraknosa pada bibit cabai (%)
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada a = 5%. Huruf kecil ke samping (dalam satu baris) menunjukkan pengaruh perlakuan periode simpan sedangkan huruf kapital ke bawah (dalam satu  kolom) menunjukkan pengaruh perlakuan coating benih. Data yang digunakan sudah ditransformasi (x+0.5)^0.5
Perlakuan benih Periode simpan (bulan) Rata-rata 0 1 2 3 4 5 Kontrol 1.3 1.2 2.8 2.5 2.2 2.2 2.0a Coating tanpa bakteri 1.2 0.7 2.6 2.4 3.1 1.3 1.9a Coating Bacillus 1.2 1.2 1.2 1.2 1.5 2.0 1.4ab Coating Pseudomonas 1.2 1.2 1.5 1.2 0.7 1.9 1.3ab Coating Actinomycetes 1.2 1.3 1.2 1.9 1.7 1.2 1.3ab Coating fungisida 1.2 1.3 0.7 0.7 1.2 1.3 1.1b Rata-rata 1.2 1.2 1.7 1.7 1.6 1.7 Tabel 6. Pengaruh perlakuan coating benih cabai terhadap hipokotil terinfeksi (%) di rumah kaca
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata  berdasarkan DMRT pada D = 5%. Data yang digunakan adalah data yang sudah ditransformasi (x+0.5)^0.5

## KESIMPULAN
Perlakuan coating Bacillus sp., Pseudomonas sp., dan Actinomycetes sp.  meningkatkan  daya  berkecambah, kecepatan  tumbuh  dan  jumlah  daun,  serta  menurunkan persentase kejadian serangan dan hipokotil terinfeksi pada benih yang sudah diinolukasi Colletotrichum acutatum dan disimpan sampai 5 bulan.

## DAFTAR PUSTAKA
Asnawi, R. Iswati, H.F.J. Motulo. 2012. Eksplorasi agens biokontrol Phytophthora  palmivora penyebab penyakit  gugur  buah  kelapa.  J.  Agroteknotropika 1:61-66.
Compant,  S., B. Duffy, J. Nowak, C. Clement, E.A. Barka. 2005.  Use  of  plant  growth-promoting  bacteria  for biocontrol of plant diseases: principles, mechanisms of  action,  and  future  prospects.  App.  Environ. Microbiol. 71:4951-4959.
Ivanovic, M. 2007. Anthracnose-a new strawberry disease in Serbia and its control by fungicides. Proc. Nat. Sci. Matica Svpska 113:71-81.
Justice,  O.L.,  L.N.  Bass.  2002.  Prinsip  dan  Praktek Penyimpanan Benih. Jakarta (ID): PT Raja Grafido Persada.
Korzybski,  T.,  Z.  Kowszyk-Gindifer,  W.  Kurylowwicz. 2013.  Antibiotics:  Origin,  Nature  and  Properties. Elsevier.
Kusuma,  Y.S.A.,  Karno,  Sutarno.  2012.  Perbanyakan vegetatif cara stek Desmodium cinereum dan Hibiscus rosa  sinensis L.  dengan  pemberian  zat  pengatur tumbuh alami dan auksin sintetis. Animal Agric. J. 1:557-565.
Muchtar,  S.D.,  E.  Widajati,  Giyanto.  2014.  Pelapisan benih  menggunakan  bakteri  probiotik  untuk mempertahankan viabilitas benih jagung manis ( Zea mays  saccharata Sturt.)  selama  penyimpanan.  Bul. Agrohorti 1:26-33.
Mujoko,  T.,  I.R.  Sastrahidayat,  T.  Hadiastono.  2005. Pemanfaatan Actinomycetes antagonis  sebagai pengendali  hayati Fusarium  oxysporum f.  sp. lycopersici pada tanaman tomat. Agrivita 27:41-46.
Munarso, S.J., Miskiyah, W. Broto. 2006. Studi kandungan residu  pestisida  pada  kubis,  tomat  dan  wortel  di Malang  dan  Cianjur.  Bul.  Teknologi  Pascapanen Pert. 2:28-32.
Nabti, E.H., N. Mokrane, M. Ghoul, H. Manyani, M. Dary, M.G. Megias. 2013. Isolation and characterization of two halophilic Bacillus ( B . licheniformis and Bacillus sp.) with antifungal activity. J. Eco. Health Env. 1:13- 37.
Noviana,  L.,  B.  Raharjo.  2009.  Viabilitas  rhizobakteri Bacillus sp . DUCC-BR-K1.3 pada media pembawa tanah  gambut  disubstitusi  dengan  padatan    limbah cair industri rokok. BIOMA 11:30-39.
Nurhayati.  2011.  Efektivitas  ekstrak  daun  sirih  terhadap infeksi Colletotrichum  capsici pada  buah  cabai. Dharmapala 3:54-59.
Nurhayati,  A.,  Umayah,  Juharto.  2012.  Antagonisme Pseudomonas  fluorescens Migule.  asal  tanah rhizospheres  pisang,  cabe  dan  jagung  terhadap Fusarium  oxysporum  f. sp .  cubense (E.F.Sm)  Sdny penyebab  penyakit  layu  pisang.  Majalah  Ilmiah Sriwijaya 22:37-40. Perlakuan benih Periode simpan (bulan) Rata-rata 0 1 2 3 4 5 Kontrol 1.6 2.1 2.3 2.5 2.6 2.7 2.3 Coating tanpa bakteri 1.6 2.1 2.3 2.5 2.6 2.7 2.3 Coating Bacillus 1.6 2.1 2.4 2.5 2.6 2.7 2.3 Coating Pseudomonas 1.7 2.2 2.4 2.5 2.6 2.7 2.3 Coating Actinomycetes 1.7 2.2 2.4 2.5 2.6 2.7 2.4 Coating fungisida 1.8 2.7 2.4 2.5 2.6 2.7 2.4 Rata-rata 1.7f 2.2e 2.4d 2.5c 2.6b 2.7a

## Tabel 8. Pengaruh perlakuan periode simpan terhadap rebah bibit cabai (%)
Keterangan: Angka yang diikuti huruf yang sama pada baris yang sama menunjukkan hasil yang tidak berbeda nyata berdasarkan DMRT pada a = 5%. Data yang digunakan sudah ditransformasi log x+1
Saraswati,  R.,  Sumarno.  2008.  Pemanfaatan  mikroba penyubur  tanaman  sebagai  komponen  pertanian. Iptek Tanaman Pangan 3:41-58.
Sari, M., E. Widajati, P.R. Asih. 2013. Seed coating sebagai pengganti  fungsi  polong  pada  penyimpanan  benih kacang tanah. J. Agron. Indonesia 41:215-220.
Setiyowati, H., M. Surahman, S. Wiyono. 2007. Pengaruh s eed coating dengan fungisida benomil dan tepung curcuma terhadap patogen antraknosa terbawa benih dan viabilitas benih cabai besar ( Capsicum annuum L). Bul. Agron. 35:176-182.
Shahab, S., N. Ahmad, N.S. Khan. 2009. Indole acetic acid production  and  enhanced  plant  growth  promotion by indigenous PSBs. African J. Agric. Res. 4:1312- 1316.
Soekarno, B.P.W., Surono, Hendra. 2013. Optimalisasi peran kompos  bioaktif  dengan  penambahan  asam  humat dan  asam  fulvat  untuk  meningkatkan  ketahanan tanaman mentimun terhadap serangan Phythium sp. Jurnal Ilmu-Ilmu Hayati dan Fisik 15:35-43.
Sutariati,  G.A.K.,  L.O.  Safuan.  2012.  Perlakuan  benih dengan  rizobakteri  meningkatkan  mutu  benih
dan  hasil  cabai  ( Capsicum  annuum L.).  J.  Agron. Indonesia 40:125-131.
Syukur,  M.,  R.  Yunianti,  Rustam,  Widodo.  2013. Pemanfaatan  sumber  daya  genetik  lokal  dalam perakitan varietas unggul cabai ( Capsicum annuum L.)  tahan  terhadap  penyakit  antraknosa  yang disebabkan oleh Colletotrichum sp. JIPI 18:67-72.
Tefa, A. 2015. Pemanfaatan bakteri probiotik untuk menekan infeksi Colletotrichum acutatum dan meningkatkan mutu  benih  cabai  ( Capsicum  annuum L.)  selama penyimpanan.  Tesis.  Sekolah  Pascasarjana.  Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Wilia, W., Widodo, S. Wiyono. 2012. Potensi khamir untuk mengendalikan penyakit antraknosa ( Colletotrichum acutatum L.)  pada  tanaman  cabai.  Online  Jurnal UNJA 1:65-72.
Zivkovic, S., S. Stojanovic, Z. Ivanovic, V. Garrilovic. 2010. Screening to anthagonistic activity of microorganisms against Colletotrichum acutatum and Colletotrichum gloeosporioides .  Arc.  Biol.  Sci.  Belgrade  62:611-
623.